ORIGINAL_ARTICLE
مناطق داغ زیستگاهی خانواده گربه سانان تحت اقلیم کنونی در ایران
در دهه های اخیر مقدار قابل توجهی از پژوهش ها بر روی پیشبینی پتانسیل های توزیع جغرافیایی گونه ها با هدف تعیین محدوده های داغ زیستگاهی متمرکز شده اند. با توجه به موقعیت خاص ایران و برخورداری از زیستگاه های متنوع و هم چنین محدودیت های موجود در کشور به نظر می رسد حفاظت از محدوده های داغ زیستگاهی موثرترین راه برای حفاظت از بسیاری از گونه ها درچشم اندازهای بزرگ باشد. هدف این مطالعه نشان دادن مناطق داغ زیستگاهی هشت گونه از خانواده گربه سانان ایران است که میتواند نقشی کلیدی در حفاظت تنوع زیستی کشور داشته باشد. این پژوهش با استخراج 19 متغیر اقلیمی از پایگاه داده Worldclimو داده های حضور خانواده گربه سانان آغاز شد. مدل سازی توزیع گونه ای با استفاده از چهار مدل RF، SVM، MAXENT و BRT در نرم افزار R انجام شد. پس از روی هم گذاری نقشه های توزیع گونه ها نقشه پیش بینی مناطق داغ زیستگاهی گربه سانان به تفکیک هر مدل تهیه شد. در نهایت برای ایجاد یک مدل با درجه اطمینان بالا، نقشه جامع مناطق داغ زیستگاهی با روش روی هم گذاری (ضرب لایه ها) برای گربه سانان ایران تهیه شد. این پژوهش بخش مرکزی ایران، لکه هایی در شمال شرق ایران و بخش هایی از رشته کوه زاگرس را به عنوان مناطق داغ زیستگاهی برای گربهسانان معرفی میکند. روی هم گذاری نقشه پیش بینی مناطق داغ زیستگاهی گربه سانان با مناطق حفاظت شده نشان داد الگوی پتانسیل زیستگاهی گربه سانان هم پوشانی نسبتاً کمی با مناطق حفاظت شده دارد و مجموعاً با 39 منطقه تحت حفاظت هم پوشانی نسبی دارد. نتایج حاصل از اعتبارسنجی نشان داد در بین مدل های مورد استفاده، مدل RF قابلیت اعتماد در سطح بسیار عالی را دارد.
http://www.aejournal.ir/article_82762_2f8697ead5bb22db7337b1a7b7d8d82f.pdf
2018-12-22
1
12
مناطق داغ زیستگاهی
گربه سانان
مدل سازی توزیع گونه ای
حفاظت تنوع زیستی
الهام
ابراهیمی
ebrahimi.iran72@gmail.com
1
گروه تنوع زیستی و مدیریت اکوسیستمها، پژوهشکده علوم محیطی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
AUTHOR
فراهم
احمدزاده
f_ahmadzade@sbu.ac.ir
2
گروه تنوع زیستی و مدیریت اکوسیستمها، پژوهشکده علوم محیطی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
بابک
نعیمی
naimi.b@gmail.com
3
گروه علوم محیط زیست، انستیتو تکنولوژی فدرال زوریخ، دانشگاه زوریخ (ETH Zurich) ، سوئیس
AUTHOR
سرهنگ زاده، ج.؛ یاوری، ا.ا. همامی، م.ر. جعفری، ح.ر. شمس اسفند آبادی، ب.، 1390. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه گونه های حیات وحش در مناطق خشک (مطالعه موردی: کل و بز Capra aegagrus) در منطقه حفاظت شدهی کوه بافق، نشریه علمی پژوهشی خشک بوم. دوره1، شماره 3، صفحه 38 تا 50.
1
شیخی ئیلانلو، ص. و کریمی، س.، 1395. تعیین کانون های تمرکز با اولویت بالای حفاظتی برای پرندگان مطالعه موردی: شهرستان نقده، محیط زیست جانوری. دوره 8، شماره 3، صفحه 29 تا 38.
2
کابلی، م.؛ علی آبادیان، م. توحیدی فر، م. هاشمی،ع. موسوی، ب. و ، روزلار، ک.، 1395. اطلس پرندگان ایران، انتشارات جهاد دانشگاهی. 628 صفحه.
3
کرمی، م.؛ قدیریان، ط. و فیض اللهی، ک.، 1395. اطلس پستانداران ایران، انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست، 240 صفحه.
4
Akhani, H., 1998. Plant biodiversity of Golestan National Park, Iran. No. 53,PP:1-411.Algar, A.C.; Kharouba, H.M.; Young, E.R.; and Kerr, J.T., 2009. Predicting the future of species diversity: macroecological theory, climate change, and direct tests of alternative forecasting methods. Ecography. Vol. 32, NO. 1, pp: 32: 22–33.
5
Allouche, O.A.; Tsoar A. and R. Kadmon., 2006. Assessing the accuracy of species distribution models: prevalence, kappa and the true skill statistic (TSS). Journal of applied ecology. Vol. 43, No. 6, pp: 1223-1232.
6
Andelman, S.J.; and Willig. M.R., 2002. Alternative configurations of conservation reserves for Paraguayan bats: considerations of spatial scale. Conservation Biology. Vol. 16, No. 5, pp: 1352-1363.
7
Austin, M.P., 1998. An ecological perspective on biodiversity investigations: examples from Australian eucalypt forests. Annals of the Missouri Botanical Garden. pp: 2-17.
8
Benesty, J.; Chen, J.; Huang, Y. and Cohen, I., 2009. Noise reduction in speech processing. Springer Science and Business Media. pp: 1-4.
9
Breckle, S.W., 2002. Salinity, halophytes and salt affected natural ecosystems. In Salinity: environment-plants-molecules. Springer, Dordrecht. pp: 53-77.
10
Breiman, L., 2001. Random forests. Machine learning. Vol. 45, No. 1, pp: 5-32.
11
Bui, D.T.; Tuan, T.A.; Klempe, H.; Pradhan, B.; and Revhaug, I., 2016. Spatial prediction models for shallow landslide hazards: a comparative assessment of the efficacy of support vector machines, artifial neuralnet works, kernel logistic regression, and logistic model tree. Landslides. Vol. 13, pp: 361-378.
12
Cabeza, M.; Araújo, M.B.; Wilson, R.J.; Thomas, C.D.; Cowley, M.J. and Moilanen, A., 2004. Combining probabilities of occurrence with spatial reserve design. Journal of applied ecology. Vol. 41, No. 2, pp: 252-262.
13
Connell, J.H., 1978. Diversity in tropical rain forests and coral reefs - high diversity of trees and corals in maintained only in a non-equilibrium state. Science. Vol. 199, No. 4335, pp: 1302–1310.
14
Cristianini, N. and Scholkopf, B., 2002. Support vector machines and kernel methods—the new generation of learning machines. Artificial Magazine. Vol. 23, No. 3, pp: 31–41.
15
Cumming, G.S., 2000. Using habitat models to map diversity: pan-African species richness of ticks (Acari: Ixodida). Journal of Biogeography. Vol. 27, No. 2, pp: 425-440.
16
Farashi, A. and Shariati, M., 2017. Biodiversity hotspots and conservation gaps in Iran. Journal for nature conservation. Vol. 39, pp: 37-57.
17
Farhadinia, M.S.; Akbari, H.; Eslami, M. and Adibi, M. A., 2016. A review of ecology and conservation status of Asiatic cheetah in Iran. Cat News Special Issue Iran. Vol.10 . pp: 18-26.
18
Farhadinia, M.S.; Moqanaki, E.M.; Hosseini-Zavarei, F. and Sharbafi, E., 2012. Baseline Information and Status Assessment of Manul (Pallas’s Cat; Otocolobus manul Pallas, 1776). Cat News Special Issue Iran. Vol.10, pp: 38-42.
19
Fernández-Martínez, M.; Vicca, S.; Janssens, I.A.; Sardans, J.; Luyssaert, S.; Campioli, M. and Papale, D., 2014. Nutrient availability as the key regulator of global forest carbon balance. Nature Climate Change. Vol. 4, No. 6, pp: 471.
20
Ferreira, R.L.C.; Silva, S.D.O.; da Silva, J.A. A.; Lira, M. D. A.; Alves, J. and Nascimento, L. M.,2016. Richness and diversity of Caatinga areas in different successional stages in northeastern Brazil. Scientia Forestalis. Vol. 44, No. 112, pp: 799-810.
21
Ferrier, S., 2002. Mapping Spatial Pattern in Biodiversity Forregional Conservation planning: Where To From Here?. Systematic Biology. Vol. 51, pp:331–363.
22
Friedman, J.H., 2001. Greedy function approximation: a gradient boosting machine. Ann. Stat. Vol. 29, pp: 1189 – 1232.
23
Ghadirian, T.H.; Akbari. M.; Besmeli. A.; Ghoddousi. A.H.; Hamidi and M. Dehkordi., 2016. Sand cat in Iran - present status, distribution and conservation challenges.Cat News Special Issue Iran. Vol.10. pp: 56-59.
24
Ghoddousi, A.; Hamidi. A. H.; Ghadirian. T. and Bani’Assadi, S., 2016. The status of wildcat in Iran-a crossroad of subspecies. Cat News Special Issue Iran. Vol.10. pp: 60-63.
25
Gioia, P. and Pigott, J.P., 2000. Biodiversity assessment: a case study in predicting richness from the potential distributions of plant species in the forests of south-western Australia. Journal of Biogeography Vol. 27, pp: 1065–1078.
26
Guisan, A. and Theurillat, J.P., 2000. Equilibrium modeling of alpine plant distribution: how far can we go? Phytocoenologia. Vol. 30, pp: 353–384.
27
Guisan, A. and Zimmermann, N.E., 2000. Predictive habitat distribution models in ecology. Ecological Modelling. Vol. 135, pp: 147-186.
28
Hijmans, R.J. and Shaffer, H. B., 2016. Amber N. Wright, Mark W. Schwartz. Climatic Change. Vol. 134, pp: 579-591.
29
Hijmans, R.J.; Cameron, S.E.; Parra, J.L.; Jones, P.G. and Jarvis, A., 2005. Very high resolution interpolated climate surfaces for global land areas. International journal of climatology. Vol. 25, No.15, pp: 1965-1978.
30
Joachims, T., 1998. Text categorization with support vector machines: Learning with many relevant features. European conference on machine learning. Antwerp. pp: 137-142.
31
Ko, C.Y.; Schmitz, O.J.; Barbet‐Massin, M. and Jetz, W., 2014. Dietary guild composition and disaggregation of avian assemblages under climate change. Global change biology. Vol. 20, No. 3, pp: 790-802.
32
Kumar, S. and Stohlgren, T.J., 2009. Maxent modeling for predicting suitable habitat for threatened and endangered tree Canacomyrica monticola in New Caledonia. Journal of Ecology and the Natural Environment. Vol. 1, No. 4, pp: 094-098.
33
Lehmann, A.; Leathwick, J.R. and Overton, J.M., 2002. Assessing New Zealand fern diversity from spatial predictions of species assemblages. Biodiversity and Conservation. Vol. 11, pp: 2217–2238.
34
Luoto, M.; Virkkala, R.; Heikkinen, R.K. and Rainio, K., 2004. Predicting bird species richness using remote sensing in boreal agricultural-forest mosaics. Ecological Applications. Vol. 14, pp: 1946–1962.
35
Magness, D. R. Huettmann, F. and Morton, J. M. 2008. Using random forests to provide predicted species distribution maps as a metric for ecological inventory and monitoring programs. In Applications of computational intelligence in biology. pp: 209-229.
36
Merow, C. Smith, M. J. and Silander, J. A. 2013. A practical guide to MaxEnt for modeling species’ distributions: what it does, and why inputs and settings matter. Ecography. Vol. 36, No.10, pp: 1058-1069.
37
Momeni Dehaghi, I. Mahiny, A. S. Shabani, A. A. and Karami, M. 2013. Efficiency of current reserve network in Golestan Province (Iran) for the protection of hoofed ungulates. Biodiversity. Vol. 14, No. 3, pp: 162-168.
38
Moser, D. Dullinger, S. Englisch, T. Niklfeld, H. Plutzar, C. Sauberer-Zechmeister, N.H.G. and Grabherr, G. 2005. Environmental determinants of vascular plant species richness in the Austrian Alps. Journal of Biogeography. Vol. 32, pp: 1117–1127.
39
Mousavi, M.; Moqanaki, E.; Farhadinia, M.; Adibi, M.A.; Rabiee, K. and Khosravi, S., 2016. The largest lesser cat in Iran - current status of the Eurasian lynx. Cat News Special Issue Iran. Vol.10, pp: 33-37.
40
Naghibi, S.A.; Pourghasemi, H.R. and Dixon, B., 2016. GIS based groundwater potential mapping using boosted regression tree, classification and regression tree, and random forest machine learning models in Iran.
41
Environ Monti Assess. Vol. 188, No. 44, pp: 1-27.
42
Nogues-Bravo, D.; Araujo, M.B.; Romdal, T. and Rahbek, C., 2008. Scale effects and human impact on the elevational species richness gradients. Nature. Vol. 453, pp: 216–219.
43
Ortega-Huerta, M.A. and Peterson, A. T., 2008. Modeling ecological niches and predicting geographic distributions: a test of six presence-only methods. Revista mexicana de Biodiversidad. Vol. 79, No. 1, pp: 205-216.
44
Parviainen, M.; Marmion, M.; Luoto, M.; Thuiller, W. and Heikkinen, R.K., 2009. Using summed individual species models and state-of-the-art modelling techniques to identify threatened plant species hotspots. Biological Conservation. 142: 2501–2509.
45
Pearson, R. G., 2007. Species distribution modeling for conservation educators and practitioners. Synthesis. American Museum of Natural History. pp: 50.
46
Phillips, S.J. and Dudík, M., 2008. Modeling of species distributions with Maxent: new extensions and a comprehensive evaluation. Ecography.Vol. 31, No. 2, pp: 161-175.
47
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological modelling. Vol: 190, No. 3, pp: 231-259.
48
Phillips, S.J.; Dudlk, M.; Schapire, R.E., 2004. A maximum entropy approach to species distribution modeling. Proceedings of the 21st International Conference on Machine Learning. Association for Computing Machinery. Vol. 30, pp: 655–662.
49
Platts, P.J.; McClean, C. J.; Lovett, J.C. and Marchant, R., 2008. Predicting tree distributions in an East African biodiversity hotspot: model selection, data bias and envelope uncertainty. Ecological Modelling. Vol. 218, No. 2, pp: 121-134.
50
Pourghasemi, H.R.; Pradhan, B.; Gokceoglu, C.; Mohammadi, M. and Moradi, H.R., 2013. Aplication of weights-of-evidence and certainty factor models and their comparison in landslide susceptibility mapping at Haraz watershed, Iran. Arabian Journal of Geosciences. Vol. 6, pp: 2351–2365.
51
Pulliam, H.R., 2000. On the relationship between niche and distribution. Ecology Letters. Vol. 3, pp: 349–361.
52
Quintero, I. and Wiens, J.J., 2013. Rates of projected climate change dramatically exceed past rates of climatic niche evolution among vertebrate species. Ecology letters. Vol. 16, No. 8, pp: 1095-1103.
53
Rondinini, C.; Wilson, K. A.; Boitani, L.; Grantham, H. and Possingham, H. P., 2006. Tradeoffs of different types of species occurrence data for use in systematic conservation planning. Ecology letters. Vol.9, No.10, pp: 1136-1145.
54
Sanei. A.; Mousavi, M.; Rabiee, K.; Khosravi, M.S.; Julaee, L.; Gudarzi, F.; Jaafari, B.; Chalani, M., 2016b. Distribution, characteristics and conservation of the jungle cat in Iran.Cat News Special Issue Iran. Vol. 10, pp: 51-55.
55
Sanei.A.; Mousavi, M.; Kiabi, B.; Masoud, M.R.; Gord Mardi, E.; Mohamadi, H.; Shakiba, M.; Baran Zehi, A.; Teimouri, M. and Raeesi, T., 2016a. Status assessment of the Persian leopard in Iran. Cat News Special Issue Iran. Vol.10, pp: 43-50.
56
Shataee, S.; Weinaker, H. and Babanejad, M., 2011. Plot- level Forest Volume Estimation Using Airborne Laser Scanner and TM Data, Comparison of Boosting and Random Forest Regression Algorithms. Procedia Environmental Sciences. Vol. 7, pp: 68-73.
57
Shruthi, R.B.V.; Kerle, N.; Jetten, V. and Stein, A., 2014. Object- based gully system prediction from medium resolution imagery using Random Forests. Geomorphology. Vol. 216, pp: 283-294.
58
Soberon, J., 2007. Grinnellian and Eltonian niches and geographic distributions of species. Ecology Letters 10: 1115–1123.
59
Thuiller, W.; Midgley, G.F.; Rouget, M. and Cowling, R.M., 2006. Predicting patterns of plant species richness in megadiverse South Africa. Ecography. Vol. 29, pp: 733–744.
60
Vapnik, V., 1995. The nature of statistical learning theory. Springer Science and Business Media.
61
Wang, L. 2005. Support Vector Machines: Theory and Applications. Springer Science and Business Media. Vol. 177, pp: 226-441.
62
Whittaker, R.H. 1972. Evolution and measurement of species diversity. Taxon. Vol. 21, pp: 231–251.
63
Xing, X.; Slabbekoorn, H.; Campbell, J.; Li, F. and Ma, J., 2017. Distinct song parts of the endemic marsh grassbird of China vary with latitude and climate among migratory and sedentary populations. Evolutionary Ecology. Vol. 31, No. 1, pp: 63-76.
64
Yang, RM.; Zhang, G.L.; Liu, F.; Lu, Y.Y.; Yang, M.; Yang, F.; Zhao, Y.G. and Li, D.C., 2016. Comparison of boosted regression tree and random forest models for mapping topsoil organic carbon concentration in an alpine ecosystem. Ecological Indicators. Vol. 60, pp: 870-878.
65
Yu, X.; Hyyppa, J.; Vastaranta, M.; Holopainen, M. and Viitala, R., 2011. Predicting individual tree attributes from airborne laser point clouds based on the random forests technique. ISPRS Journal of Photogrammetry and remote sensing. Vol. 66, No. 1, pp: 28-37.
66
Zhao, H.; Sun, J. Xu, X. and Qin, X., 2017. Stoichiometry of soil microbial biomass carbon and microbial biomass nitrogen in China's temperate and alpine grasslands. European Journal of Soil Biology. Vol. 83, pp: 1-8.
67
ORIGINAL_ARTICLE
مدل سازی مطلوبیت زیستگاه پلنگ ایرانی (Panthera pardus saxicolor) در پناهگاه حیات وحش خوش ییلاق با روش تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی
پلنگ ایرانی (Pantera pardus saxicolor) یکی از 37 گونه گربهسان دنیا به شمار میآید، که در اکثر زیستگاههای طبیعی کشور به صورت انفرادی زیست میکند و برای خود قلمرو مشخصی دارد. آگاهی از نیازهای زیستی گونهها نقشی اساسی در برنامهریزی حفاظت از گونهها دارد. ارزیابی زیستگاه حیات وحش یکی از ملزومات اساسی جهت شناخت نیازهای زیستی و فیزیکی گونه برای حفاظت میباشد. شناسایی مکانهایی که صرفا در یک زیستگاه مورد استفاده حیاتوحش قرار میگیرند ما را به شناخت پارامترهای خُرد زیستگاهی مطلوب جانور رهنمون میکنند. این مطالعه با هدف تعیین مطلوبیت زیستگاه پلنگ ایرانی با روش ENFA در این منطقه در پاییز سال 1393 انجام شده است، مهمترین متغیرهایی در انجام این تحقیق پراکنش طعمه، پوشش گیاهی، نزدیکی به مناطق مسکونی، خطوط حمل و نقل، شیب، ارتفاع و منابع آب هستند. نتایج نشان میدهد، به طور کلی نزدیک به 20 درصد از کل پناهگاه حیات وحش خوشییلاق زیستگاهی مطلوب برای پلنگ می باشد. مهمترین عامل موثر بر حضور یا عدم حضور پلنگ در این منطقه تحت تاثیر طعمههایش، به ویژه کل و بز و قوچ و میش قرار دارد، به علاوه مطلوبترین زیستگاه پلنگ در این منطقه در ارتفاعات بالا بین 1700 تا 2000 متر از سطح دریا و در شیبهای 30 تا 60 درصد یعنی مناطق صخرهای و صعبالعبور کوهستانی واقع شده است. در حقیقت قلب زیستگاه حفاظت شده خوشییلاق به سبب وجود کوههای مرتفع و صخرهای و همچنین تمرکز بالای حضور طعمه، مطلوبترین و امنترین نقاط برای حضور این گونه می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_84230_2a222383b150c81c67bb4e240e6bfd2b.pdf
2018-12-22
13
22
ارزیابی زیستگاه
حیات وحش
خوش ییلاق
پارامترهای خرد
پلنگ ایرانی
حیدر
روحی
haydarrouhi@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
هادی
تحسینی
haditahsini@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه کردستان، سنندج، ایران
LEAD_AUTHOR
عبدالرسول
سلمان ماهینی
mahini@gau.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
حمیدرضا
رضایی
rezaei@gau.ac.ir
4
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
امیدی، م.، 1387. تجزیه وتحلیل و مدل سازی زیستگاه پلنگ ایرانی در پارک ملی کلاه قاضی استان اصفهان. پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشکده محیط زیست و انرژی دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات تهران. 95 صفحه.
1
سلمانماهینی، ع. و کامیاب، ح.ر.، 1388. سنجش از دور و سامانههای اطلاعات جغرافیایی کاربردی با نرمافزار ایدریسی. انتشارات مهر مهدیس. تهران. 582 صفحه.
2
ضیایی، ه.، 1387. راهنمایی صحرایی پستانداران ایران. انتشارات کانون آشنایی با حیات وحش. 350 صفحه.
3
عرفانیان، ب.، 1390. مسیریابی بهینه گذرگاههای حرکتی پلنگ در پارک ملی گلستان. پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشکده شیلات و محیط زیست گرگان. 136صفحه.
4
فلاحی، م.، 1389. بررسی تأثیر عشایر کوچنده بر مطلوبیت زیستگاه کل و بز در پارک ملی لار. پایاننامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی. واحد علوم و تحقیقات. 117 صفحه.
5
شعاعی، ا.؛ قلیپور، م.؛ رضایی، ح.ر. و یارمحمدی، ث.، 1396. ارزیابی مطلوبیت زیستگاه پلنگ ایرانی (Panthera pardus saxicolor, Pocock 1927) با روش آنتروپی بیشینه (Maxent) در پارک ملی تندوره طی فصول تابستان و پاییز.فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 1، صفحات 21 تا 30.
6
مبرقع، م.، 1386. ارزیابی زیستگاه پلنگ ایرانی در پارک ملی توران با بهکارگیری روشHEP. پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشکده منابع طبیعی دانشگاه صنعتی اصفهان. 120صفحه.
7
Anderson, M.C.; Watts, J.M.; Freilich, J.E.; Yool, S.R.; Wakefield, G.I.; Mccaulery, J.F. and Fahnestock, A., 2000. Regression-tree modeling of desert tortoise habitat in the centeral Mojave.
8
Boyce, M., 2002. Evaluating resource selection functions. Ecol. Modell. Vol. 157, pp: 281-300.
9
Clark, L.A. and Pregibon, D., 1992. Tree-based Models. Statistical Models in S. (ed. by J.M. Chambers and T.J. Hastie), Chapman and Hall, New York. pp: 377-419.
10
Darvish Sefat, A., 2006. Atlas of protected areas of Iran. Department of the Environment, Iran. 157 p.
11
Ghoddousi, A.; Khleghi Hamidi, A.M.; Ghadirian, T.; Ashayeri, D.; Hamzepour, M.; Moshiri, H. and Julay, L.I., 2008. Territorial marking by Persian leopard (Pantera pardus saxicolor Pocock, 1927) in Bamu national park. Short communication. Zoology in meddle East. Vol. 44, pp: 101-103.
12
Guisan, A. and Zimmermann, N.E., 2000. Predictive habitat distribution models in ecology. Ecological Modeling. Vol. 135, pp: 147-186.
13
Hirzel, A.H.; Hausser, J.; Chessel, D. and Perrin, N., 2002. Ecological Niche Factor Analysis: How to compute habitat suitability maps without absent data. Ecology. Vol. 83, pp: 2027-2036.
14
Hirzel, A.H.; Hausser, J. and perrin, N., 2007. Biomapper 4.0, Laboratory for Conservation Biology, Department of Ecology and Evolution, University of Lausanne, Switzerland. URL, Viewed 10 November 2010. <http://www2.unil.ch /biomapper>.
15
Huntera, L.; Balme, G.; Walker, C.; Pretorius, K. And Rosenberg, K., 2003. The landscape ecology of leopards (Panthera pardus) in northern KwaZula-natal, South Africa: A preliminary project report. Ecological journal.
16
Mertzanis, G.; Korakis, G.; Kallimanis, A.; Sgardelis, St. and Aravidis, I., 2006. Bear habitat suitability in relation to habitat types of European interest in NE pindos mountain range, Greece. pp: 321-326.
17
Morrison, M.L.; Marcot, B.G. and Mannan, R.W., 1992. Wildlife-habitat relationships: Concepts and applications. University of Wisconsin Press, Madison, Wisconsin, USA.
18
Pontius, R.G.Jr. and Schneider, L., 2001. Land-use change model validation by a ROC method for the Ipswich watershed, Massachusetts, USA. Agriculture, Ecosystems & Environment. Vol. 85, No. 1-3, pp: 239-248.
19
Strubbe, D. and Matthysen, E., 2008. Predicting the potential distribution of invasive ring-necked parakeets.
20
Wang, X.; Weihua, X. and Ouyang, Zh., 2009. Integrating population size analysis into habitat suitability assessment: implications for giant panda conservation in the Minshah Mountain, China. The Ecological Society of Japan.
21
ORIGINAL_ARTICLE
کمیسازی از همگسیختگی زیستگاه حیات وحش با استفاده از رهیافت اکولوژی سیمای سرزمین (مطالعه موردی: پارک ملی لار و منطقه حفاظت شده ورجین)
مدیریت مناطق با رویکرد اکولوژی سیمای سرزمین مدیریت جامعتری را سبب میشود و با استفاده از آن میتوان بسیاری از ارزشهای مناطق را حفظ نمود. یکپارچگی و ارتباط داشتن زیستگاهها در مناطق حفاظت شده برای دوام جمعیتهای گیاهی و جانوری مهم است، بررسی یکپارچگی مناطق حفاظت شده میتواند برای ارتباط دادن لکههای محدود شده و کمک برای مقابله با تأثیرات از همگسیختگی مفید واقع شود. بدین منظور این تحقیق با هدف کمی نمودن از هم گسیختگی زیستگاه حیات وحش در پارک ملی لار و منطقه حفاظت شده ورجین و مقایسه وضعیت یکپارچگی زیستگاه گونههای پلنگ، قوچ و میش و کل و بز انجام گرفت. در این راستا نقشه کاربری اراضی مناطق با استفاده از تکنیک RS و GIS استخراج گردید و نقشههای زیستگاه حیات وحش نیز از سازمان حفاظت محیط زیست تهیه گردید و به منظور شناسایی عوامل انسان ساخت تاثیرگذار بر روی پراکندگی حیات وحش از روش هندسهی از همگسیختگی استفاده شد. نتایج حاصل از این تحقیق نشان داد با تحلیل سنجه های سیمای سرزمین و هندسههای از همگسیختگی میتوان به شناسایی مهمترین عوامل تاثیر گذار بر روی یکپارچگی زیستگاه گونههای مختلف در راستای حفاظت از آنها و حفظ تنوع زیستی پرداخت. نتایج نشان داد در پارک ملی لار عوامل راههای خاکی، کشاورزی و سد به ترتیب بر روی از همگسیختگی زیستگاه پلنگ، کل و بز و قوچ و در منطقه حفاظت شده ورجین کاربری کشاورزی مهم ترین عامل موثر بر روی زیستگاه حیات وحش است.
http://www.aejournal.ir/article_81048_e677d0a09f16ac6e4a7d20cf2835e626.pdf
2018-12-22
23
34
ازهم گسیختگی زیستگاه
پارک ملی لار
منطقه حفاظت شده ورجین
زیستگاه حیات وحش
فاطمه
حق وردی
mina_haghverdi@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده محیط زیست، کرج، ایران
AUTHOR
علی
جهانی
ajahani@ut.ac.ir
2
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، کرج، ایران
AUTHOR
لعبت
زبردست
lzebardast@ut.ac.ir
3
گروه برنامهریزی و مدیریت محیط زیست، دانشکده محیط زیست، دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
مجید
مخدوم فرخنده
mmakhdom@ut.ac.ir
4
گروه محیط زیست و تنوع زیستی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
حمید
گشتاسب
meygooni1959@gmail.com
5
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
براتی، ب.؛ جهانی، ع.؛ زبردست، ل. و رایگانی، ب.، 1396. ارزیابی یکپارچگی مناطق حفاظت شده با به کارگیری رهیافت اکولوژی سیمای سرزمین(منطقة مورد مطالعه: پارک ملی و پناهگاه حیات وحش کلاه قاضی).آمایش سرزمین. دوره 9، شماره 1، صفحات 153 تا 168
1
جباری، س.؛ خواجهالدین، ج.؛ سلطانی، س. و جعفری، ر.، 1390. تعیین درصد پوششگیاهی مراتع با استفاده از سنجش از دور و سیستم اطلاعات جغرافیایی (مطالعهی موردی: سمیرم اصفهان). همایش ملی ژئوماتیک.
2
جعفری، ش.؛ علیزاده شعبانی، ا. و دانهکار، ا.، 1391. بررسی تغییرات ساختاری دریاچه ارومیه با استفاده از متریکهای سیمایسرزمین. اکولوژی تالاب - دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز، سال 4، شماره 14، صفحات 45 تا 54.
3
رسولی،ع.؛ عباسیان،ش.وجهانبخش،س.، 1387. پایش نوسانهای سطح آب دریاچه ارومیه با پردازش تصاویر ماهوارهای چند سنجندهای و چند زمانهای. فصلنامه مدرس علوم انسانی. دوره 12، شماره 2، صفحات 53 تا 71.
4
رفیعی،ی.؛ملکمحمدی،ب.؛ آبکار،ع.؛یاوری،ا.؛ رمضانی مهریان،م. وظهرابی،ح.، 1390. بررسی تغییرات زیستمحیطی تالابها و مناطق حفاظت شده با استفاده از تصاویر چند زمانه سنجنده TM (مطالعه موردی : تالاب نیریز). محیطشناسی. سال 37، شماره 57، صفحات 65 تا 76.
5
راهداری، و.؛ سفیانیان، ع.؛ خواجهالدین، ج. و ملکی نجفآبادی، س.، 1392. بررسی قابلیت دادههای ماهوارهای در تهیه نقشه درصد تاجپوشش گیاهی مناطق خشک و نیمهخشک (مطالعهی موردی: پناهگاه حیاتوحش موته). علوم تکنولوژی محیطزیست. دوره 15، شماره 23، صفحات 43 تا 54.
6
زبردست، ل.؛ یاوری، ا.؛ صالحی، ا. و مخدوم، م.، 1390. استفاده از متریک اندازه موثر شبکه در تحلیل از همگسیختگی پوششهای جنگلی محدوده اثر جاده در پارک ملی گلستان. محیطشناسی. سال 37، شماره58، صفحات 15 تا 20.
7
علویپناه، ک.، 1382. کاربرد سنجش از دور در علوم زمین (علوم خاک). انتشارات دانشگاه تهران. تهران. 478 صفحه.
8
عبدالهی.ا.؛ جهانی، ع.؛ رایگانی، ب. و محمدی فاضل، ا.، 1396. ارزیابی آثار سدسازی بر تغییرات کاربری اراضی زیر حوضه های غرب جنوب و دریاچه ارومیه با تصویرهای ماهواره ای. پژوهشهای محیط زیست. سال 8، شماره 15، صفحات 39 تا 50.
9
کرمی، آ. و فقهی، ج.، 1391. پایش و مقایسه کاربری اراضی زاگرس شمالی و جنوبی با رویکرد اکولوژی سیمای سرزمین (مطالعهی موردی: استانهای کردستان و کهگیلویه و بویراحمد). آمایش سرزمین. سال 4، شماره 6، صفحات 5 تا 34.
10
مهندسین مشاور یکم، 1381. طرح مدیریت زیستمحیطی منطقه حفاظت شده ورجین. سازمان حفاظت محیطزیست - دفتر زیستگاهها و امور مناطق.
11
مهندسین مشاور یکم، 1381. طرح مدیریت زیستمحیطی پارک ملی لار. سازمان حفاظت محیطزیست - دفتر زیستگاهها و امور مناطق.
12
مجنونیان، ه.، 1380. پارکهای ملی و مناطق حفاظت شده (ارزشها و کارکردها). انتشارات سازمان حفاظت محیطزیست. تهران. 480 صفحه.
13
Ahern, j. and Andre, L., 2003. Applying Landscape Ecological Concepts and Metrics in Sustainable Landscape Planning. Landscape and Urban Planning. Vol. 59, No. 2, pp: 65-93.
14
Anderson, J.R.; Hardy, E.E.; Roach, J.T and Witmer, R.E., 1976. Lands Cover Classification System for Use with Remote Sensor Data. United States Government Printing Office. Washington, USA. pp: 80-85.
15
Forman, R.T.T., 1995. Land mosaics: The ecology of landscapes and regions. Cambridge University press, USA. 607-656.
16
Girvetz, E.H.;Thorne, J.H.; Berry, A.M. and Jeager, J.A.G., 2008. Integration of Landscape Fragmentation Analysis into Regional Planning: A Statewide Multi-Scale Case Study from California, USA. Vol. 86, No. 3-4, pp: 205-218.
17
Jaeger, J., 2002. Landscape Fragmentation: A Transdisciplinary Study According to the Concept of Environmental Threat Verlag Eugen Ulmer, Stuttgart, Germany. 447pp.
18
Jaeger, J.A.G.; Bertiller, R.; Schwick, C.; Muller, K.; Steinmeier, C.; Ewald, K.C. and Ghazoul, J., 2008. Implementing Landscape Fragmentation as an Indicator in the Swiss Monitoring System of Sustainable Development (MONET). Environmental Management. Vol. 88, No. 4, pp: 737-751.
19
Leitao, A.B. and Ahren, J., 2002. Applying Landscape Ecological Concepts and Metrics in Sustainable Landscape Planning. Landscape and Urban Planning, Vol. 59, No.2, pp: 65-93.
20
McGarigal, K. and Marks, B.J., 1995.FRAGSTATS: Spatial Pattern Analysis Program for Quantifying Landscape Structure. Forest Science Department. Oregon State University, Corvallis.
21
Mairota, P.; Cafarelli, B.; Boccaccio, L.; Leronni, V.; Labadessa, R.; Kosmidou, V. and Nagendra, H., 2013. Using Landscape Structure to Develop Quantitative Baselines for Protected Area Monitoring. Ecological Indicators. Vol. 33, pp: 82-95.
22
Quintana, S.; M., Ramos,B. M., Martinez,M. A. C. & Pastor,I. O. 2010. A model for assessing habitat fragmentation caused by new infrastructures in extensive Territories-Evaluation of the impact of the Spanish strategic infrastructure and transport plan. Journal of Environmental Management. (91): 1087–1096
23
Turner, M.G.; Gardner, R. H. and O'neill, R.V. 2001. Landscape Ecology in Theory and Practice Pattern and Process, New York, Springer
24
ORIGINAL_ARTICLE
فراوانی و شدت خسارت گوشت خواران به دامداران روستایی در شرق استان اصفهان
شناسایی آسیبها و خسارات ناشی از حمله حیوانات وحشی به دام اهلی، طیور و انسان از مباحث مهم در مدیریت حیات وحش است. حمله حیوانات وحشی، خسارات و هزینههای مالی و حتی آسیبهای روحی به افراد خسارت دیده وارد میکند. اولین قدم در پیشگیری از بروز این خسارات یا مدیریت آن، ارزیابی میزان و شدت خسارت و شناسایی عواملی است که نقش مهمی در ایجاد تعارض بین انسان و حیاتوحش دارد. تاکنون در ایران، پژوهشهای به نسبت محدودی درباره شدت خسارت حیاتوحش به انسان در مقایسه با سایر عوامل طبیعی انتشار یافته است. برای شناخت بهتر رابطه انسان و گوشتخواران در ایران، این پژوهش در منطقه شرق استان اصفهان شامل شهرستانهای نایین و اردستان و از طریق مصاحبه با 367 نفر از ساکنان 18 روستا انجام شد. در این مطالعه براساس نظر مصاحبهشوندگان، گونههای آسیبرسان و میزان آسیبپذیری دام و طیور ناشی از بیماری و حملات گوشتخواران در بازه زمانی زمستان 1395 تا بهار 1396 بررسی شد. نتایج نشان داد که بر اساس اعتقاد دامداران مصاحبه شده، بیشترین تلفات دام مربوط به گرگ خاکستری (92/7% موارد گزارششده خسارت حیاتوحش) بوده و گونههای دیگر شامل شغال، روباه معمولی،کفتار راهراه، گربه وحشی،کاراکال و پلنگ با سهم اندک در ادعای تعارض در رتبههای بعدی قرار گرفتند. بررسی سایر عوامل موثر بر تلفات دام در این منطقه نشان داد که خسارت تلفات دام اهلی ناشی از بیماریها 2/5 برابر تلفات گزارش شده از حمله گرگ بوده است. بهنظر میرسد که مشاهده به نسبت فراوان گرگ در منطقه توسط روستاییان و ذهنیت آنان از رفتار تهاجمی گرگ باعث شده که در نظر مردم محلی، گرگ بهعنوان مهمترین عامل تلفات دام شناخته شود. نتایج حاصل از مقایسه عوامل موثر بر آسیبپذیری دام نشان داد که نگهداری گوسفندان در آغلهای مسقف که توسط سگهای نگهبان مراقبت میشوند و همچنین دوری کردن از محلهای فعالیت گرگ مخصوصاً در زمان پرورش تولههای گرگ، کارآمدترین شیوه محلی در کاهش خسارت گرگ به روستاییان (حمله به دام) است.
http://www.aejournal.ir/article_85254_6f1ed7293d4c1cc5bc2bb8771b97b037.pdf
2018-12-22
35
44
تعارض
حمله به دام اهلی
گرگ
گوشت خواران
برنامه ریزی حفاظتی
مکرمه
بهمنش
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران، کدپستی: 8415683111
AUTHOR
منصوره
ملکیان
mmalekian@cc.iut.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران، کدپستی: 8415683111
LEAD_AUTHOR
سیما
فاخران اصفهانی
fakheran@cc.iut.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران، کدپستی: 8415683111
AUTHOR
محمود رضا
همامی
mrhemami@cc.iut.ac.ir
4
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران، کدپستی: 8415683111
AUTHOR
محسن
احمدی
5
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران، کدپستی: 8415683111
AUTHOR
احمدی، م.؛ کابلی، م.؛ ایمانی، ج.؛ خسروی، ر. و الماسی، م.، 1391. تدوین برنامه مدیریت استراتژیک جمعیت گرگ (Canis Lupus) در استان همدان با رویکرد کاهش تعارضات بین انسان و گرگ. نشریه محیط زیست طبیعی. شماره 3، صفحات 271 تا281
1
آمایش سرزمین و سند راهبردی توسعه استان اصفهان. 1392. ارزیابی توان محیطی سرزمین. دانشگاه صنعتی اصفهان. 670 صفحه.
2
حسینیزوارهای، ف.؛ محمدیمقانکی، ا.؛ فرهادینیا، م.ص.؛ سهرابینیا، ص.؛ جعفرزاده، ف. و شعربافی، ا.، 1394. طعمه خواری گرگ (Canis lupus) از دام اهلی و اثر آن بر نگرش و اقتصاد مردم محلی در پناهگاه حیات وحش انگوران، استان زنجان. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 7، شماره 4، صفحات 21 تا 30.
3
عبداللهی، ش.؛ محمدی، ح. و نصرتی، م.، 1391. بررسی وضعیت خسارات وارده از ناحیه حیات وحش در ایران. فصلنامه علمی محیط زیست. دوره 52، شماره 5، صفحات 1 تا 8.
4
Alexander, J.; Chen, P.; Damerell, P.; Youkui, W.; Hughes, J.; Shi, K. andRiordan, P.H., 2015. Human wildlife conflict involving large carnivores in Qilianshan, China and the minimal paw-print of snow leopards. Biological Conservation. Vol. 187, pp: 1-9.
5
Babrgir, S.; Farhadinia, M.S. and Moqanaki, E.M., 2017. Socio-economic consequences of cattle predation by the Endangered Persian leopard Panthera pardus saxicolor in a Caucasian conflict hotspot, northern Iran. Oryx. Vol. 51, No. 1, pp: 124-130.
6
Behdarvand, N.; Kaboli, M.; Ahmadi, M.; Nourani, E.; Salman Mahini, S. andAsadi Aghbolaghi, M., 2014. Spatial risk model and mitigation implications for wolf Human conflict in a highly modified agroecosystem in western Iran. Biological Conservation. Vol. 177, pp: 156-164.
7
Capitani, C.; Bertelli, I.; Varuzza, P.; Scandura, M. and Apollonio, A., 2004. A comparative analysis of wolf (Canis lupus) diet in three different Italian ecosystems. Mammalian Biology. Vol. 69, No. 1, pp:1-9.
8
Chynoweth, M.; Coban, E.; Alton, C. and Sekercioglu, C., 2016. Human wildlife conflict as a barrier to large carnivore management and conservation in Turkey.Turkish Journal of Zoology. Vol. 40, pp: 972-983.
9
Ciucci, P. and Boitani, L., 1998. Wolf and dog depredation on livestock in central Italy. Wildlife Society Bulletin.
10
Vol. 2, pp: 504-514.
11
Cochran,G.W.,1977. Sampeling Techniqes, 3rd Edition.428p.
12
Conover, M.R., 2008. Why are so many people attached by predator?http://digitalcommons.unl.edu/hwi. Version 1/1/2008.
13
Dickman, A.J., 2010. Complexities of conflict: the importance of considering social factors for effectively resolving human-wildlife conflict. Animal Conservation. Vol. 13, No. 5, pp: 458-466.
14
Farhadinia, M.S.; Johnson, P.J.; Hunter, L.T. and Macdonald, D.W., 2017. Wolves can suppress goodwill for leopards: Patterns of human predator coexistence in northeastern Iran. Biological conservation. Vol. 213, pp: 210-217.
15
HosseiniZavarei, F.; Farhadinia, M.S.; Beheshti Zavareh, M. and Abdoli, A., 2013. Predation by grey wolf on wild ungulates and livestock in central Iran.Jornal of Zoology. Vol. 290, No. 2, pp: 127-134.
16
Karanth, K.;Gopalaswalmy,A.;Prasad, P.and Dasgupta, Sh., 2013. Patterns of human-wildlife conflicts and compensation: Insights from Western Ghats protected areas. Biological Conservation. Vol. 166, pp: 175-185.
17
Kellert,S.R.; Black, M.; Rush, C.R. and Bath, A.J., 1996. Human culture and large carnivore conservation in North America. Biological conservation. Vol. 10, No. 4, pp: 977-990.
18
Khorozyan, I.; Soofi, M.; Soufi, M.; Hamidi, A.K.; Ghoddousi, A. and Waltert, M., 2017. Effects of shepherds and dogs on livestock depredation by leopards (Panthera pardus) in north eastern Iran. Peer J. Vol. 5, pp: 30-49.
19
Madden, F., 2004. Creating coexistence between humans and wildlife: global perspectives on local efforts to address human-wildlife conflict. Human Dimension of Wildlife. Vol. 9, No. 4, pp: 247-257.
20
Madison, J.S., 2008. Yosemite national park: the continuous evolution of human black bear conflict management. Human Wildlife Conflicts. Vol. 2, No. 2, pp: 160-167.
21
Meriggi, A.; Brangi, A.; Matteucci,C.andSacchi,O., 1996. The feeding habits of wolves in relation to large prey availability in northern Italy. Ecography. Vol. 19, No. 3, pp: 287-295.
22
Mishra, C., 1997. Livestock depredation by large carnivores in the Indian Trans Himalaya. Environmental Conservation. Vol. 24, No. 4, pp: 338-343.
23
Nass, R.D.; Lynch, G. and Theade, J., 1984. Associated circumstances goats on and sheep with predation rates. Journal of Range Management. Vol. 37, No. 5, pp: 423-426.
24
Oli, M.K.; Tayor, L.R. and Elizabeth Roger, M., 1994. Snow leopard Panthera uncia predation of ivestock: An assessment of local perceptions in the Annapurna conservation area, Nepal. Biological conservasion. Vol. 68, No. 1, pp: 63-68.
25
Pettigrew, M.; Xie, Y.; Kang, A.; Rao, M.; Goodrich, J.; Liu, T. and Berger, J., 2012. Human carnivore conflict in China: a review of current approaches with recommendations for improved management. Integrative Zoology. Vol. 7, No. 2, pp: 210-226.
26
Rigg, R.; Findo, S.; Wechselberger, M.; Gorman, M.L.; Sillerozubiri, C. and Macdonald, D.W., 2012. Mitigating carnivore livestock conflict in Europe: lessons from Slovakia. Oryx. Vol. 45, pp: 180- 272.
27
Tourani, M.; Moqanaki, E.M.; Boitani, L. and Ciucci, P., 2014. Anthropogenic effects on the feeding habits of wolves in an altered arid landscape of central Iran. Mammalia. Vol. 78, No. 1, pp: 117-121.
28
Treves, A. and Karanth, K.U., 2003. Human carnivore conflict and perspectives on carnivore anagement worldwide. Biological conservation. Vol. 17, No. 6, pp: 1491-1499.
29
Treves,A.;Martin,K.A.;Wydeven,A.P.and Wiedenhoeft, J.E., 2011. Forecasting environmental hazards and the application of risk maps to predator attacks on livestock. Bioscience. Vol. 61, pp:451-458.
30
Tug, S., 2005.Conflicts between humans and wolf: A study in Bozdag, Kon province, Turkey. MSc thesis. Department of biodiversity. Middle east technical university. Turkey. 58 p.
31
Wang, S.W. and Macdonald, D.W., 2006. Livestock predation by carnivores in Jigme Singye Wangchuck National Park, Bhutan. Biological Conservation. Vol. 129, No. 4, pp: 558-565.
32
Worthy, F.R. and Foggin, J.M., 2008. Conflicts between local villagers and Tibetan brown bears threaten conservation of bears in a remote region of the Tibetan Plateau. Human-Wildlife Conflict. Vol. 8, No.2, pp: 200-205.
33
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی قابلیت زیستگاه مطلوب قوچ و میش با استفاده از مدل MaxEnt (مطالعه موردی: منطقه حفاظت شده تنگ صیاد)
حفظ زیستگاه یکی از مهمترین فاکتورها در جهت حفاظت از گونه ها می باشد. از آنجاکه مطالعه پراکنش گونه های حیات وحش، مستلزم صرف هزینه و زمان قابل توجهی می باشد، روش های مدل سازی به عنوان ابزاری در جهت تسهیل و تسریع در این زمینه مطرح می باشند. این مطالعه با هدف تعیین عوامل موثر بر پراکنش قوچ و میش در منطقه حفاظت شده تنگ صیاد واقع در استان چهارمحال و بختیاری با استفاده از مدل MaxEnt طی سال های 1395 لغایت 1396برای فصول بحرانی (بهار، تابستان و زمستان) صورت پذیرفت. در این پژوهش از متغیرهای محیطی مختلفی شامل، فاصله از منابع آب، پوشش گیاهی، فاصله از مناطق مسکونی، فاصله از جاده، شیب، جهت و ارتفاع برای ورود به نرم افزار و تهیه نقشه مطلوبیت استفاده شد نتایج مدلسازی نشان داد متغیر فاصله از منابع آب بیش ترین تاثیر در انتخاب زیستگاه مطلوب برای گونه در سه فصل را دارد. هم چنین بررسی ها نشان داد که قوچ و میشهای منطقه تنگ صیاد تمایل زیادی به حضور در شیب های 20 تا 40 درجه و ارتفاع بین 2000 تا 2400 متر دارند. با توجه به نقشه مطلوبیت زیستگاه به دست آمده برای قوچ و میش در منطقه حفاظت شده تنگ صیاد مناطق مطلوب به صورت پراکنده هستند و مطلوبیت زیستگاه برای قوچ و میش در فصل بهار از دو فصل دیگر بیش تر است (15260 هکتار). از نتایج این مطالعه میتوان در اجرای اقدامات حفاظتی و مدیریتی جهت افزایش زیستگاه های مطلوب استان چهارمحال و بختیاری استفاده نمود.
http://www.aejournal.ir/article_85302_ed80bd2300f84388c8e776f33204a266.pdf
2018-12-22
45
54
مطلوبیت زیستگاه
قوچ و میش
مدل حداکثر آنتروپی
منطقه حفاظت شده تنگ صیاد
هوشمند
مالکپور
hoshmandmalekpoor20182@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی، منابع طبیعی و کویرشناسی، دانشگاه اردکان، اردکان، ایران
AUTHOR
مریم
مروتی
maryam_morovati147@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی، منابع طبیعی و کویرشناسی، دانشگاه اردکان، اردکان، ایران
LEAD_AUTHOR
مهدی
تازه
mtazeh@ardakan.ac.ir
3
گروه مدیریت مناطق خشک و بیابانی ،دانشکده کشاورزی، منابع طبیعی و کویرشناسی، دانشگاه اردکان، اردکان، ایران
AUTHOR
روح ا...
تقی زاده
rtaghizadeh@ardakan.ac.ir
4
گروه مدیریت مناطق خشک و بیابانی ،دانشکده کشاورزی، منابع طبیعی و کویرشناسی، دانشگاه اردکان، اردکان، ایران
AUTHOR
سرهنگ زاده، ج.؛ یاوری، ا.؛ همامی، م.؛ جعفری، ح. و شمس اسفندآباد، ب.، 1392. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش (Ovis orientalis) با استفاده از رویکرد تحلیل عامل آشیان بوم شناختی در منطقه حاظت شده کوه بافق. پژوهش های محیط زیست. شماره 8، صفحات 169 تا 182.
1
شمس اسفندآباد، ب.؛ کرمی، م. و همامی، م.، 1389. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه رویکردی نوین برای برنامه ریزی حفاطت از تنوع زیستی. مجموعه مقالات اولین همایش ملی بررسی تهدیدات و عوامل تخریب تنوع زیستی در منطقه زاگرس مرکزی. دانشگاه صنعتی اصفهان.
2
ﺷﯿﻮﻧﺪی، د. و نظریان، ع.، 1386. ﺳﯿﻤﺎی ﻃﺒﯿﻌﯽ ﻣﻨﺎﻃﻖ ﺗﺤﺖ ﻣﺪﯾﺮﯾﺖ اﺳﺘﺎن ﭼﻬﺎرﻣﺤﺎل و ﺑﺨﺘﯿﺎری. اﻧﺘﺸﺎرات اداره ﮐﻞ ﺣﻔﺎﻇـﺖ ﻣﺤﯿﻂ زﯾﺴﺖ اﺳﺘﺎن ﭼﻬﺎرﻣﺤﺎل و ﺑﺨﺘﯿﺎری، شهرکرد. 120 صفحه.
3
ضیایی، ه.، 1387. راهنمایی صحرای پستانداران ایران، انتشارات آشنایی با حیات وحش، تهران. 457 صفحه.
4
علیزاده احمدآباد،ز.؛نادری،س.وسعادت علی قیالو،ن.، 1394. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه پاییزه قوچ و میش در پارک ملی بمو براساس روش حداکثر آنتروپی. همایش ملی کشاورزی و منابع طبیعی.
5
کرمی، م.؛ ریاضی،ب. و کلانی، ن.، 1385. ارزیابی زیستگاه کفتار راهراه ایرانی(Hyaena hyaena hyaena) در پارک ملی خجیر و سرخه حصار و ارایه مدل مطلوبیت. مجله علوم محیطی. شماره 11، صفحات 77 تا 86.
6
کریمی،س.؛وارسته مرادی،ح.؛ رضایی، ح. و قدیمی، م.، 1391. مدل سازی رضامندی زیستگاه دارکوب سیاه و دارکوب خالدار بزرگ با استفاده از رگرسیون منطقی. پژوه شهای محیط زیست. سال3، شماره 5، صفحات 47 تا 56.
7
گلجانی،ر.؛کابلی، م.؛ کرمی، م.؛ نعیمی، ب. و علیزاده شعبانی، ا.، 1389. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه پاییزه گوسفند وحشی البرز مرکزی (Ovis gmelini) در مجموعه حفاظت شده جاجرود. مجله منابع طبیعی ایران. دوره 63، شماره 2، صفحات 173 تا 186.
8
مروتی، م.، 1393. ارزیابی مطلوبیت زیستگاه یوزپلنگ آسیایی (Acinonyx jabatus venaticus) با استفاده از مدل Maxent و پیشبینی پراکنش آتی آن در ایران (مطالعه موردی: استان یزد- پناهگاه حیات وحش دره انجیر). پایان نامه دکتری. دانشکده انرژی و محیط زیست، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات.
9
ملکی نجف آبادی، س.؛ همامی، م. و سلمان ماهینی، ع.، 1389. تعیین مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش اصفهانی در پناهگاه حیات وحش موته با استفاده از روش تحلیل آشیان بوم شناختی. مجله منابع طبیعی ایران. دوره 63، شماره 3، صفحات 279 تا 290.
10
Baldwin, R.A., 2009. Use of maximum entropy modeling in wildlife research. Entropy. Vol. 11, pp: 854-855.
11
Buckley Lauren, B., 2010. The range implications of lizard traits in changing environments. Global Ecology and Biogeography. Vol. 19, No. 4, pp: 452-464.
12
Decout, S. and Signer, J., 2010. Habitat Distribution and Connectivity for the black grouse (Tetrao tetrix) in the Alps. Econnectproject.eu.
13
Eigenbrod, F.; Hecnar, S. and Fahrig, L., 2008. Accessible habitat: an improved measure of the effects of habitat loss and roads on wildlife populations. Landscape Ecology. Vol. 23, No. 2, pp: 159-168.
14
Elith, J.; Phillips, S.J.; Hastie, T.; Dudík, M.; Chee, Y.E. and Yates, C.J., 2011. A statistical explanation of maxent for ecologists. Divers. Distrib. Vol. 17, pp: 43-57.
15
Gibson, L.A.;Wilson, B.A.; Cahill, D.M. and Hill, J., 2003. Modeling Habitat Suitability of the Swamp Antechinus (Antechinus minimus maritimus) in the costal heathlands of soutern Victoria, Australia. International journal of biological conservation. Vol. 117, pp: 143-150.
16
Giovanelli, J.G.R.D.; Siqueira, M.F.; Haddad, C.F.B. and Alexandrino, J., 2010. Modeling a spatially restricted distribution in the Neotropics: how the size of calibration area affects the performance of five presences only methods. Ecological Modelling. Vol. 221, pp: 215-224.
17
Hirzel, A.H.; Lay, G.L.; Helfera, V.C.; Randina, C. and Guisana, A., 2006. Evaluating the ability of habitat suitability models to predict species presences. Ecological modelling. Vol. 199, pp: 142-152.
18
Jacqain, A.; Cheret, V.; Denux, j.P.; Gay, M.; Mitcheley, J. and Xofis, P., 2005. Habitat suitability modeling of caperailie (Tetrao urogallus) using each observation data. Journal of Nature Conservation. Vol. 13, pp: 161-169.
19
Kneib, T.; Knauer, F. and Kuchenhoff, H., 2011. A general approach for the analysis of habitat selection. Environmental and Ecological Statistics. Vol. 18, pp: 1-25.
20
Luoto, M.; Heikkinen, R.K.; Poyry, J. and Saarinen, K., 2006. Determinants of the biogeographical distribution of butterflies in boreal regions. Journal of Biogeography. Vol. 33, pp: 1764-1778.
21
Martinez, I.;Carreno,F.;Escudero,A.andRubio,A., 2006. Are threatened lichen species well-protected in spain? Effevtivnes of a protected area network. Biological Conservation. Vol. 133, pp: 500-511.
22
Omidi, M.; Kaboli, M.; Karami, M.; Salman Mahini, A. and Hasanzadeh Kiabi, B., 2010. Habitat suitability modelin of Panthera pardus saxicolor by ENFA in Kolahghazi. Journal of environment sicence and technology. Vol. 12, No. 1, PP: 137-148.
23
Pearson, R.G., 2007. Species’ distribution modeling for conservation educators and practitioners. American Museum of Natural History. pp: 1-50.
24
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2005. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological Modelling. Vol. 244, pp: 259-231.
25
Rezaei, H.R.; Naderi, S.; Cristina Chintauan-Marquiera, I.; Taberleta, P.; Virkd, A.T.; Naghasha, H.R.; Riouxa, D.; Kabolie, M. and mPompanona, F., 2009. Evolution and Taxonomy of the Wild Species of the Genus Ovis. Molecular Phylogenetics and Evolution. Vol. 45, No. 2, pp: 315-326.
26
Rubin, S.E.; Boyce, W.M.; Stermerb, W.M. and Torres, S.G., 2002. Bighorn sheep habitat use and selection near an urban environment. Biological conservation Vol. 104, pp: 251-263.
27
Thorn,J.S.;Nijman,V.;Smith,D.andNekaris,K.A.I.,2009. Ecological niche modeling as a technique for assessing threats and setting conservation priorities for Asian slow lorises. Diversity Distribution. Vol. 21, pp: 289-298.
28
Valdez, R., 2008. Ovis orientalis. In: IUCN 2008. 2008 IUCN Red List of Threatened Species.
29
Weihua, X. and Chong, L., 2010. Application of MaxEnt Model in Rhinopithecus roxllanae Habitat Assessment in Qinling Mountain, Forest Engineering.
30
Williams, A.K., 2003. The influence of probability of detection when modeling species occurrence using GIS and survey data: Virginia Polytechnic Institute and State University. 281 p.
31
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی ارزش حفاظتی منطقه دامگاهان بهعنوان کریدور زیستگاهی کل و بز (Capra aegagrus) بین منطقه حفاظت شده کالمند- بهادران و منطقه شکار ممنوع شیرکوه
امروزه جدایی و تکه تکه شدن زیستگاه اثرات بسیار مهمی بر روی جمعیت های حیات وحش دارد.گسترش مناطق حفاظت شده و ایجاد ارتباط بین این مناطق از مهم ترین راهکارهای مقابله با این معضل است.کریدورها نقش مهمی روی توزیع جمعیت حیات وحش و جلوگیری از کاهش بقای جمعیت دارد. پژوهش حاضر با هدف بررسی ارزش حفاظتی منطقه دامگاهان بهعنوان کریدور زیستگاهی بین منطقه حفاظت شده کالمند-بهادران و منطقه شکار ممنوع شیرکوه با وسعت 106000 هکتار انجام گرفته است. با استفاده از نقاط حضور گونه و متغیرهای محیط زیستی مدل سازی مطلوبیت زیستگاه بز وحشی با روش تحلیل آشیان بوم شناختی انجام شد. سپس با بهره گیری از نقشه مطلوبیت زیستگاه و با استفاده از روش کم هزینه ترین مسیر، کریدورها مشخص شدند. مهم ترین متغیرهای موثر بر حضور کل و بز مناطق صخرهای، درصد شیب، ارتفاع از سطح دریا، دامنهها و پوششگیاهی می باشند. میزان حاشیهگرایی و تخصص گرایی به ترتیب 0/838 و 3 برآورد گردید که نشان می دهد بز وحشی مجموعه شرایط محیط زیستی بـالاتر از شـرایط میانگین منطقه را ترجیح می دهد و به دامنه محدودی از شـرایط محیط زیستی منطقه وابسته است و در استفاده از منابع زیستگاه تخصصی عمل می کند. بیش از 60 درصد وسعت کریدورهای پیشنهادی را زیستگاههای مطلوب تشکیل می دهند. با محاسبات صورت گرفته هفت کریدور جهت اتصال مناطق شناسایی گردید. نتایح نشان داد که محدوده دامگاهان دارای مطلوبیت زیستگاهی بالا وکمترین هزینه تجمعی و کمترین تعارضات انسانی در بین کریدورها برای بز وحشی می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_85628_e7f72ea5edc6bb2aee88b688d57d6de4.pdf
2018-12-22
55
64
کریدور زیستگاهی
کل و بز
دامگاهان
مهریز
ریحانه
میرانزاده
reyhane.miranzade90@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشگاه یزد، یزد، ایران، صندوق پـستی: 741- 89195
AUTHOR
جلیل
سرهنگ زاده
jsarhangzadeh@yazd.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشگاه یزد، یزد، ایران، صندوق پـستی: 741- 89195
LEAD_AUTHOR
محمدحسین
ایراننژاد پاریزی
irannezhad@yazd.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشگاه یزد، یزد، ایران، صندوق پـستی: 741- 89195
AUTHOR
حسن
اکبری
haenv@yahoo.com
4
گروه محیط زیست، دانشگاه یزد، یزد، ایران، صندوق پـستی: 741- 89195
AUTHOR
اداره کل حفاظت محیط زیست استان یزد. 1391. گزارش ارتقاء سطح حفاظتی منطقه شکارممنوع شیرکوه. معاونت محیط طبیعی. 40 صفحه.
1
تیموری، م.، 1394. نگاهی بر سیمای طبیعی شهرستان مهریز. انتشارات سام آرام. استان یزد.
2
حسینی،س.م.؛ ریاضی، ب.؛ شمس اسفندآباد، ب. و نادری، م.، 1396. ارزیابی مطلوبیت زیستگاه کل و بز Capra aegagrus در استان گلستان. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 12، شماره 1، صفحات 9 تا 16.
3
سرهنگزاده، ج.؛ یاوری، ا.؛ همامی، م.؛ جعفری، ح. و شمس اسفندآباد، ب.، 1390. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه گونه های حیاتوحش در مناطق خشک (مطالعه موردی: کل و بز (Capra aegagrus) در منطقه حفاظت شده کوه بافق. مجله خشک بوم. دوره 1، شماره 3، صفحات 38 تا 50.
4
شهولایتی، ا.، 1392. دانش محیط زیستی راه نجات مناطق حفاظت شده (مطالعه موردی منطقه حفاظت شده کالمند-بهادران). اولین همایش ملی گردشگری، سرمایه های ملی، چشمانداز آینده. اصفهان.
5
زارعزاده، ع.؛ میروکیلی، م. و میرحسین، ع.، 1385. معرفی فلور، شکل زیستی و پراکنش جغرافیایی گیاهان دره دامگاهان مهریز (استان یزد). پژوهش و سازندگی در منابع طبیعی. دوره 19، شماره 4، صفحات 129 تا 137.
6
ضیایی،ه.، 1387. راهنمای صحرایی پستانداران ایران.انتشارات کانون آشنایی با حیات وحش (چاپ دوم).
7
فراشی، آ.؛ کابلی، م. و مومنی، ا.، 1389. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه بز و پازن (Capra aegagrus) بهکمک روش تحلیل عاملی آشیان بومشناختی (ENFA) در پارک ملی کلاهقاضی. نشریه محیط زیست طبیعی. دوره 63، شماره 1، صفحات 63 تا 73.
8
فراشی، آ.، 1393. مروری بر مدل سازی زیستگاه به عنوان ابزاری برای مدیریت زیستگاه های حیات وحش، مجله علمی- پژوهشی زیستشناسی جانوری تجربی. سال 3، شماره 3، پیاپی 11، صفحات 43 تا 53.
9
کریمی، ش.، 1395. تعیین زیستگاههای ارتباطی بالقوه گونه کل و بز وحشی(Capra aegagrus) در حد فاصل مناطق حفاظت شده کوسالان- شاهو و بدر و پریشان در استان کردستان. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه کردستان.
10
مشهدی احمدی، ا.ع.؛ شمس اسفندآباد، ب. و گشتاسب میگونی، ح.، 1393. مدل سازی مسیرهای گدار گوسفند وحشی البرز مرکزی با استفاده از آنالیز کم هزینه ترین مسیر در استان تهران (O.o.arkali & O.o.vigneii). علوم و مهندسی محیط زیست. سال 1، شماره 3، صفحات41 تا 58.
11
مصطفوی، س.؛ علیزاده، ا.؛ کابلی، م.؛ کرمی، م.؛ گلجانی،ر. و محمدی، س.، 1389. تهیه نقشه مطلوبیت زیستگاههای بهاره و تابستانه گونه پازن (Capra aegagrus aegagrus) در پارک ملی لار. فصلنامه علوم و فنون منابع طبیعی. دوره 5، شماره 2، صفحات 111 تا 121.
12
Basille, M.; Calenge, C.; Marboutin, E.; Andersen, R. and Gaillard, J.M., 2008. Assessing habitat selection using multivariate statistics: some refinements of the ecological niche factor analysis. Ecol. Model. Vol. 211, pp: 233-240.
13
Crooks, K.R. and Sanjayan, M., 2006. Connectivity Conservation. Cambridge University Press, Cambridge, UK. 732 p.
14
Fox, J.L.; Sinha, S.P. and Chundawat, R.S., 1992. Activity patterns and habitat of ibex in the himalaya mountain of India. Mammalogy. Vol. 73, No. 3, pp: 527-534.
15
Hartley, D. and Aplet, G.H., 2001. Modeling Wildlife Habitat Corridors in the Greater Grand Staircase. Escalante Ecosystem.
16
Hirzel, A.H.; Le Lay, G.; Helfer, V.; Randin, C. and Guisan, A., 2006. Evaluation the ability of habitat suitability models to predict species presences. Ecological Modelling. Vol. 199, No .2, pp: 142-152.
17
Hirzel, A.H.; Hausser, J. and Perrin, N., 2004. Biomapper 3.1. Lab. of Conservation Biology, Department of Ecology and Evolution, University of Lausanne. URL: http: //www. unil.ch/biomapper.
18
Jenness, J.; Majka D. and Beier. P., 2014. Corridor Designer Evaluation Tools: Extension for ArcGIS. Jenness Enterprises. www.jennessent.com/arcgis/corridor.htm.
19
Majka, D.; Jennes, J. and Beier. P., 2007. Corridor Designer: ArcGIS tools for designing and evaluating corridors. www.corridordesign.org.
20
Meffe, G.K. and Carroll, C.R., 1997. Principles of conservation biology, 2nd edition. Sinauer Associates, Sunderland, MA.
21
Minor, E.S. and Urban, D.L., 2007. Graph theory as a proxy for spatially explicit population models in conservation planning. Journal of Ecological Applications. Vol. 17, pp: 1771-1782.
22
Morovati, M.; Karami, M. and Kaboli, M., 2014.Desirable Areas and Effective Environmental Factors of Wild Goat Habitat (Capra aegagrus). Int. J. Environ. Res. Vol. 8, No. 4, pp: 1031-1040.
23
Nikolakaki, P., 2004. A GIS site-selection process for habitat creation: estimating connectivity of habitat patches. Landscape and Urban Planning. Vol. 68, pp: 77-94.
24
Pearson, R.G.; Raxworthy, C.J.; Nakamura, M.; Peterson, A.T., 2007. Predicting species distributions from small numbers of occurrence records: a test case using cryptic geckos in Madagascar. J. Biogeogr. Vol. 34, pp: 102-117.
25
Rabinowitz, A. and Zeller, K.A., 2010. A range-wide model of landscape connectivity and conservation for the jaguar, Panthera onca. Biol Conserv. Vol. 143, pp: 939-945.
26
Sarhangzadeh, J.; Yavari, A.R.; Hemami, M.R.; Jafari, H.R. and Shams Esfandabad, B., 2013. Habitat suitability modeling for wild goat (Capra aegagrus) in a mountainous arid area, central Iran. Caspian J. Env. Sci. Vol. 11, No. 1, pp: 41-51.
27
Sawyer, S.; Epps, C. and Brashares, J., 2011. Placing Linkages Among Fragmented Habitats: Do Least- Cost Models Reflect How Animals Use Landscapes? Journal of Applied Ecology.
28
Shams, B.; Karami, M.; Hemami, M.R, Riazei B. and Sadough, M.B., 2010. Habitat associations of wild goat in central Iran: implications for conservation. European journal of wildlife research. Vol. 56, pp: 883-894.
29
Wang, Y.; Yang, K.; Bridgman, C.L. and Lin, L., 2008. Habitat suitability modeling to correlate gene flow with landscape connectivity. Journal of Landscape Ecology. Vol. 23, pp: 989-1000.
30
Wayumba, R.N.; Jasper, N. and MWENDA, K.; 2006. The Impact of Changing Land Tenure and Land Use on Wildlife Migration within Group Ranches in Kenya: A Case Study of the Amboseli Ecosystem, in Promoting Land Administration and Good Governance. Regional Conference Accra. Ghana. pp: 1-8.
31
Zeller, K.A.; McGariga, L.K. and Whiteley, A.R., 2012. Estimating landscape resistance to movement. Journal of Landscape Ecology. Vol. 27, pp: 777-797.
32
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی آشیان بومشناختی قوچ و میش (Ovis oriantalis) در مناطق حفاظتشده لشگردر- گلپرآباد، الوند-چالخاتون- راسوند و پلنگاب
این مطالعه بهمنظور بررسی آشیان اکولوژیک بالقوه قوچ و میش (Ovis oriantalis) مناطق حفاظتشده لشگردر-گلپرآباد، پلنگاب و الوند-چالخاتون- راسوند انجام گرفته است. متغیرهای زیستگاهی مشابه در تمام زیستگاه شناسایی و رقومیسازی شدند. سپس با استفاده مدل آنتروپی بیشینه (MaxEnt) آشیان اکولوژیک بالفعل گونه در محدوده مناطق مورد مطالعه بررسی شد. بهمنظور دستیابی به آشیان اکولوژیک بالقوه محدوده که تمام مناطق نامبرده را در برگیرد انتخاب و مدلسازی آشیان اکولوژیک بالقوه نیز با استفاده از مدل آنتروپی بیشینه انجام گرفت. مقادیر متغیرهای زیستگاهی نقشهها به ازا نقاط حضور استخراج و سپس از آنالیز خوشهای K-Means بهمنظور خوشهبندی نقاط حضور براساس شباهت استفاده شد. درنهایت با استفاده از شاخصهای هم پوشانی (Schoener’s D، Hellinger’s I) و پهنا (Levin’s B1،B2 (uncertainty))، میزان همپوشانی و پهنای آشیان اکولوژیک گونه مذکور اندازهگیری شد. نتایج تحلیل خوشه نشان داد که براساس متغیرهای زیستگاهی نقاط حضور، مناطق لشگردر-گلپرآباد و الوند-چال خاتون- راسوند بیش ترین شباهت را دارند، اما براساس نتایج مدل آنتروپی بیشینه بیش ترین هم پوشانی آشیان اکولوژیک بالقوه و بالفعل بین منطقه شکارممنوع پلنگاب و لشگردر-گلپرآباد بوده و از طرفی میزان تخصص گرایی قوچ و میش در آشیان بالقوه و بالفعل در مناطق الوند-چال خاتون-راسوند بیش از سایر مناطق بوده است.
http://www.aejournal.ir/article_85629_b098b15ccaa7541cd7ce87c8447b6cb5.pdf
2018-12-22
65
74
قوچ و میش
پهنای آشیان اکولوژیک
تخصص گرایی
مطلوبیت زیستگاه
پیمان
کرمی
peymankarami1988@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
AUTHOR
کامران
شایسته
ka_shayesteh@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
LEAD_AUTHOR
ابراهیمی، ا.؛ فراشی، آ. و راشکی، ع.،۱۳۹۶. مدل سازی زیستگاه قوچ و میش ارمنی در ایران. دومین همایش بین المللی ایده های نوین در معماری، شهرسازی، جغرافیا و محیط زیست پایداری. ساج گستر کاسپین. مشهد ۷ صفحه.
1
احمدپور، م.؛ وارسته مرادی، ح.؛ اکبری، ح و ایمانی هرسینی، ج.، ۱۳۹۴. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش اوریال (Ovis orientalis arkal) در پناهگاه حیات وحش دره انجیر یزد. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال ۷، شماره۲، صفحات 11 تا 18.
2
ادارهکلحفاظتمحیطزیست استان مرکزی. 1395. زیر پورتال محیطزیست طبیعی و تنوع زیستی. مناطق چهارگانه تحت مدیریت.
3
انصاری، ا.، 1395. مقایسه مدل مطلوبیت زیستگاه گوسفند وحشی (Ovis orientalis) با استفاده از روش ENFA و MaxEnt در استان مرکزی. محیط زیست جانوری. سال 8، شماره 2، صفحات 9 تا 16.
4
بهرامی نژاد، م.؛ نظامی بلوچی، ب. و حقانی، ع .، 1395. لکه های زیستگاهی مناسب برای حفاظت از قوچ و میش اوریال (Ovis Orientalis) در منطقه حفاظتشده درمیان، استان خراسان جنوبی. فصلنامه محیطزیست جانوری. سال 8، شماره 4، صفحات 9 تا 16.
5
جعفری، ع.؛ میرزائی، ر.؛ زمانی، ر. و محمودی، ا.، 1395. مدلسازی پراکنش قوچ و میش اصفهان در منطقه حفاظتشده تنگ صیاد براساس بهبود اریب داده های حضور و انتخاب متغیر مناسب با استفاده از روش حداکثر آنتروپی. فصلنامه اکولوژی کاربردی. سال 5، شماره 15، صفحات 39 تا 48.
6
جهانگردی و توریسم. 1396. ایران گشت، نگینی در دل کوه چال خاتون. روزنامه. شماره 1414.
7
رضایی، س.؛ نادری، س. و کرمی، پ.، 1396. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه بهاره و تابستانه گراز (Sus scrofa) در پناهگاه حیاتوحش جاسب استان مرکزی با استفاده از روش حداکثر آنتروپی. فصلنامه محیطزیست جانوری. سال 9، شماره 2، صفحات 25 تا 36.
8
رضایی، ع.؛ کابلی، م.؛ اشرفی، س. و اکبری، ح.، 1395. تعیین پهنای آشیان بومشناختی پلنگ ایرانی (Panthera pardus saxicolor) در منطقه حفاظتشده کوه بافق. فصلنامه محیطزیست جانوری. سال 8، شماره 1، صفحات 1 تا 8.
9
رم یاز، م.؛ نادری، س.؛ کرمی، پ. و بهنام، غ.، 1396. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه پاییزه و زمستانه گوسفند وحشی (Ovis Orientalis) در منطقه حفاظتشده پرور براساس روش حداکثر آنتروپی بیشینه. فصلنامه محیطزیست جانوری. سال 9، شماره 2، صفحات 17 تا 24.
10
سرهنگ زاده، ج.؛ یاوری، ا.ر.؛ همامی، م.ر.؛ جعفری، ح. و شمس اسفندآباد، ب.، 1392. مدلسازی مطلوبیت زستگاه قوچ و میش (Ovis Orientalis) با استفاده از رویکرد تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی در منطقه حفاظتشده کوه بافق. فصلنامه پژوهش های محیطزیست. سال 4، شماره 8، صفحات 169 تا 182.
11
صفری گنگ، ز.؛ همامی، م.ر.؛ کوهی، م. و ملکیان، م.، 1393. انتخاب خردزیستگاه توسط مارمولک های هم بوم روزفعال در پارکملی کلاه قاضی. پژوهش های جانوری. جلد 27، صفحات 367 تا 376.
12
فیروزی جهان تیغ، ف. و عامری، ح.، 1394. بررسی ویژگی های بیماران مبتلا به سل با استفاده از روش خوشه بندی K-means. مجله انفورماتیک سلامت و زیست پزشکی. دوره 2، صفحات 149 تا 159.
13
کرمی، پ.؛ شایسته، ک.؛ کرمی، ا. و حسینی، س.م.، 1396. پذیرفته شده برای چاپ شناسایی دالانهای زیستگاهی گوسفند وحشی ارمنی (Ovis Orientalis) در بستر سیمای سرزمین مبتنی بر تئوری مدارهای الکتریکی مطالعه موردی: مناطق لشگر در و گلپر آباد. فصلنامه پژوهش های جانوری.
14
کرمی، پ.؛ کمانگر، م. و حسینی، س.م.، 1395. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه آهوی ایرانی در منطقه شکار ممنوع قراویز و استان کرمانشاه با استفاده از شبکه عصبی مصنوعی. فصلنامه پژوهش های جانوری. جلد 29، شماره 3، صفحات 340 تا 352.
15
کفاش، ا. و یوسفی، م.، 1396. اثرات منفی تغییرات اقلیمی آینده بر روی لاسرتاهای کوه زی ایران. فصلنامه محیطزیست طبیعی ایران. دوره 70، شماره 1، صفحات 149 تا 160.
16
محمدیان، ع. و طهماسبی، پ.، 1395. شکست تصادفی آشیان اکولوژیک گونههای گیاهی مراتع در اثر چرای حیوانات (مطالعه موردی: شهرستان بروجن، استان چهارمحال بختیاری). مجله مهندسی اکوسیستم بیابان. سال 5، شماره 10، صفحات 23 تا 32.
17
مروتی، م.؛ کرمی، م.؛ کابلی، م.؛ روستا، ز. و شرکائی، م.ج.، 1392. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش مهم ترین طعمه یوزپلنگ آسیایی (Acinonyx jubatus venaticus) با استفاده از روش حداکثر آنتروپی در پناهگاه حیات وحش دره انجیر یزد. فصلنامه محیطزیست جانوری. سال6، شماره 4، صفحات 135 تا 149.
18
ملکیان، م. و همامی، م.ز.، 1391. مبانی زیست شناسی حفاظت. چاپ اول. انتشارات جهاد دانشگاهی مشهد. 304 صفحه.
19
موسوی، ط.، 1390. انتخاب و تقسیم بندی زیستگاه توسط کبک (Alectoris chukar) و تیهو (Ammoperdix griseogularis) مطالعه موردی منطقه شکارممنوع خائیز. پایان نامه کارشناسی ارشد محیط زیست. دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان. 70 صفحه.
20
Bergallo, H.G. and Rocha, C.F.D., 1994. Spatial and trophic niche differentiation in two Sympatric lizards with different foranging mode. Australian J of Ecology. Vol. 19, pp: 72- 75.
21
Bragin, N.; Amgalanbaatar, S.; Wingard, G. and P. Reading, R., 2017. Creating a model of habitat suitability using vegetation and ruggedness for Ovis ammon and Capra sibirica (Artiodactyla: Bovidae) in Mongolia. Journal of Asia-Pacific Biodiversity. Vol. 10, pp: 390-395.
22
Cao, Y.; DeWalt, R.E.; Robinson, J.L.; Tweddale, T.; Hinz, L. and Pessino, M., 2013. Using Maxent to model the historic distributions of stonefly species in Illinois streams: The effects of regularization and threshold selections. Journal of Ecological Modelling. Vol. 259, pp: 30-39.
23
Capula, M. and Luiselli, L., 1994. Resource partitioning in a Mediterranean lizard community. Italian Journal of Zoology. Vol. 61, pp: 173-177.
24
Elith, J.; Graham, C.H.; Anderson, R.P.; Dudík, M.; Ferrier, S.; Guisan, A.; Hijmans, R.J.; Huettmann, F.; Leathwick, J.R.; Lehmann, A.; Li, J.; Lohmann, L.G.; Loiselle, B.A.; Manion, G.; Moritz, C.; Nakamura, M.; Nakazawa, Y.; Overton, J.M.; Peterson, A.T.; Phillips, S.J.; Richardson, K.; Scachetti-Pereira, R.; Schapire, R.E.; Sobero, N.J; Williams, S.; Wisz M.S. and Zimmermann, E., 2006. Novel methods improve prediction of species’ distribution from occurrence data. Journal of Ecography. Vol. 29, pp: 129-151.
25
Goljani, R.; Kaboli, M.; Karami, M.; Ghodsizadeh, Z. andNourani, E., 2012. Male Alborz Red Sheep Migration Cor-ridors Selection from Summer to Fall Habitats in Jajroud Protected Area Complex, Iran. Russian Journal of Ecology. Vol. 43, pp: 67-76.
26
Guisan, A. and Zimmermann, N.E., 2000. Predictive habitat distribution models in ecology. Journal of Ecological Modelling. Vol. 135, No. 2–3, pp: 147–186.
27
Hirzel, A.H. and Lay. G.L., 2008. Habitat suitability modelling and niche theory. Journal of Applied Ecology. Vol. 45, pp: 1372-1381.
28
Hosseinian, S.; Mirshamsi, O.; Ilgaz, Ç.; Kumlutaş, Y. and Avci, A., 2016. Ecological niche divergence between Trapelus ruderatus and Trapelus persicus (Sauria: Agamidae) in the Middle East. Journal of Asian Herpetological Research. Vol. 7, No. 2, pp: 96-102.
29
Krebs, C.J., 1999. Ecological methodology. California: Benjamin. Cummings. 620 p.
30
Levins, R., 1968. Evolution in Changing Environments. Monographs in Population Biology, volume 2. Princeton University Press, Princeton, New Jersey, USA.
31
Mallon, D., 1983. The status of Ladakh urial Ovis orientalis vignei in Ladakh, India. Biological conservation. Vol. 27, No. 4, pp: 373-381.
32
Mirshamsi, O., 2013. Ecological niche modeling of two scorpion species Mesobuthus eupeus (C. L. Koch, 1839) and M. phillipsii (Pocock, 1889) from the Iranian Plateau and Zagros region. Journal of Euscorpius Occasional Publications in Scorpiology. No. 154.
33
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. J of ecological modeling. Vol. 190, pp: 231-259.
34
Phillips, S.J. and Dudík, M., 2008. Modeling of species distributions with Maxent: new extensions & a comprehensive evaluation. J of ecography. Vol. 31, pp: 161-175.
35
Radosavljevic, A. and Anderson, R.P., 2014. Making better Maxent models of species distributions: complexity, overfitting & evaluation. J of biogeogr. Vol. 41, pp: 629-643.
36
Rhoden, C.M.; Peterman, W.E. and Taylor, C.A., 2017. Maxent directed field surveys identify new populations of narrowly endemic habitat specialists. J of peer. Vol. 5, pp: 3632.
37
Rouag,R.;Luiselli,L.; Dgilali, H. and Gueraiche, H., 2007. Resource partitioning patterns between two sympatric lizard species from Algeria. Journal of Arid Environments. Vol. 69, pp: 158-168.
38
Salas, E.A.L.; Valdez, R. and Michel, S., 2017. Summer and winter habitat suitability of Marco Polo argali in southeastern Tajikistan: A modeling approach. Journal of Heliyon. Vol. 3, No. 11, pp: 445.
39
Schoener, T.W., 1968. Anolis lizards of Bimini: resource partitioning in a complex fauna. Journal of Ecology. Vol. 49, pp: 704-726.
40
Templ, M.; Filzmoser, P. and Reimann, C., 2008. Cluster analysis applied to regional geochemical data: Problems and possibilities. Journal of Applied Geochemistry. Vol. 23, No. 8, pp: 2198-2213.
41
Vorsino, A.E.; King C.B.; Haines W.P. and Rubinoff, D., 2013. Modeling the Habitat Retreat of the Rediscovered Endemic Hawaiian Moth Omiodes continuatalis Wallengren (Lepidoptera: Crambidae). PLoS ONE8. Vol. 1, pp: 51885.
42
Warren, D.L.; Glor, R.E. and Turelli, M., 2008. Environmental niche equivalency versus conservatism: quantitative approaches to niche evolution. Evolution. Vol. 62, pp: 2868-2883.
43
Zare Chahouki, M.A.; Jafari, M.; Azarnivand, H.; Moqadam, M.; Farahpoor, M. and Shafizade, M., 2007. Application of logistic regression to study the relationship between presence of plant species and environmental factors. Journal of Pajouhesh-Va-Sazandegi. Vol. 76, pp: 136-143.
44
ORIGINAL_ARTICLE
مدل سازی مطلوبیت زیستگاه گونه گوسفند وحشی در پناهگاه حیات وحش بوروئیه استان یزد با استفاده از روش حداکثر آنتروپی (MAXENT)
گوسفند وحشی (Ovis orientalis) از پستانداران شاخص مناطق تپه ماهوری است و از نظر حفاظتی در فهرست سرخ اتحادیه بین المللی حفاظت از طبیعت، در طبقه آسیب پذیر (VU) قرار دارد. پناهگاه حیات وحش بوروئیه به عنوان یکی از زیستگاه های این گونه در جنوب استان یزد به منظور مطالعه زیستگاه گوسفند وحشی و مدل سازی مطلوبیت براساس داده های حضور با استفاده از روش حداکثر آنتروپی (MaxEnt) مورد بررسی قرار گرفت. برای مدل سازی و مدیریت گونه به عنوان گونه شاخص مناطق تپه ماهوری و دامنه های کوهستانی، در ابتدا باید عوامل مؤثر بر پراکنش گونه شناسایی و سپس مدل مطلوبیت زیستگاه برای حفاظت و مدیریت این زیستگاه ها طراحی شود، تا گونه هدف حفاظت شود. از متغیرهای زیست محیطی به عنوان متغیر مستقل و نقاط حضور گونه به عنوان متغیر وابسته در مدل سازی مطلوبیت زیستگاه استفاده شد. هدف از این تحقیق تعیین زیستگاه مطلوب برای گوسفند وحشی با استفاده از نقاط حضور و متغیرهای محیط زیستی با روش حداکثر آنتروپی می باشد. نقشه مطلوبیت به دست آمده نشان می دهد که متغیرهایی هم چون شیب 50-30 درصد، اراضی مرتعی و مناطق تپه ماهوری در تعیین زیستگاه مطلوب حائز اهمیت می باشند. باتوجه به این که 0/939 =AUC می باشد، بنابراین مدل به دست آمده دارای کارایی پیش بینی بسیار خوبی است و نمودار جک نایف نشان داد که مدل در پیش بینی نقاط حضور به عنوان زیستگاه مطلوب موفق بوده است. براساس مدل سازی انجام شده 28/24 درصد از وسعت پناهگاه حیات وحش بوروئیه، زیستگاه مطلوبی برای گوسفند وحشی می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_85633_a1897e24a2af2f027c1906a688378803.pdf
2018-12-22
75
82
گوسفند وحشی
مطلوبیت زیستگاه
حداکثر آنتروپی
پناهگاه حیات وحش بوروئیه
عباس
نقیب زاده
abbas.n.114@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و کویرشناسی، دانشگاه یزد، یزد، ایران، صندوق پـستی: 741- 89195
LEAD_AUTHOR
ندا
رضایی
nedarezaei253@gmail.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و کویرشناسی، دانشگاه یزد، یزد، ایران، صندوق پـستی: 741- 89195
AUTHOR
جلیل
سرهنگ زاده
jsarhangzadeh@yazd.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و کویرشناسی، دانشگاه یزد، یزد، ایران، صندوق پـستی: 741- 89195
AUTHOR
نادر
سیدی
sayedinader@gmail.com
4
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و کویرشناسی، دانشگاه یزد، یزد، ایران، صندوق پـستی: 741- 89195
AUTHOR
احمدپور، م.؛ وارسته مرادی، ح.؛ اکبری، ح. و ایمانی هرسینی، ج.، 1394. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه قوچ ومیش اوریال (Ovis orientalisarkal) در پناهگاه حیات وحش دره انجیر یزد. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 7، شماره 2، صفحات 11 تا 18.
1
انصاری، ا.، 1395. مقایسه مدل مطلوبیت زیستگاه گوسفند وحشی (Ovis orientalis) با استفاده از روش ENFA و MAXENT در استان مرکزی. فصلنامه محیطزیست جانوری. سال 8، شماره 2، صفحات 9 تا 16.
2
بهرامی نژاد، م.، نطامی بلوچی، ب. و حقانی، ع.، 1395. لکه های زیستگاهی مناسب برای حفاظت از قوچ و میش اوریال (Ovis vignei) در منطقه حفاظت شده درمیان، استان خراسان جنوبی. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 8، شماره 4، صفحات 9 تا 16.
3
پهلوانی، ع.، 1383. ارزیابی زیستگاه قوچ و میش اوریال پارک ملی گلستان. مجله محیط شناسی. شماره 35، صفحات 1 تا 8.
4
تاکی، ز.؛ همامی، م. ر.؛ کرمی، م. و علیزاده، ا.، 1395. انتخاب فصلی زیستگاه توسط گوسفند وحشی اصفهانی (Ovis orientalis isphahanica) در پارک ملی قمیشلو. علوم وتکنولوژی محیط زیست. دوره 18، ویژه نامه شماره 2، صفحات 425 تا 431.
5
جعفری، ع.؛ میرزایی، ر.؛ زمانی، ر. و محمودی، ا.، 1395. مدل سازی پراکنش قوچ و میش اصفهان در منطقه حفاظت شده تنگ صیاد براساس بهبود اریب داده های حضور و انتخاب متغیرهای مناسب با استفاده از حداکثر آنتروپی. بوم شناسی کاربردی. سال 5، شماره 15، صفحات 39 تا 48.
6
دیده بان محیطزیست و حیات وحش ایران، 1391. وبسایت: http://www.iew.ir..
7
رم یاز، م.؛ نادری، س.؛ کرمی، پ. و بهنام، غ.، 1396. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه پاییزه و زمستانه گوسفند وحشی (Ovis orientalis) منطقه حفاظت شده پرور براساس روش حداکثر آنتروپی بیشینه. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 2، صفحات 17 تا 24.
8
رنجبر، ن. و شاهقلیان، ج.، 1392. روش های ارزیابی مطلوبیت زیستگاه. نخستین کنفرانس بین المللی اکوالوژی سیمای سرزمین، دانشگاه صنعتی اصفهان، ایران.
9
زیدی، ا.؛ زمانی، ن.؛ مومنی اصل، م.؛ کولیوند، ح.؛ گنجی، ر. و میرزاوند، ر.، 1392. معرفی روش MaxEnt برای ارزیابی زیستگاه حیات وحش در ایران. اولین همایش سراسری محیط زیست، انرژی و پدافند زیستی. صفحات 1 تا 9.
10
سرهنگ زاده، ج. و ایران نژادپاریزی، ب.، 1392. بررسی وضعیت پناهگاه حیات وحش بوروئیه. اولین همایش ملی برنامه ریزی حفاظت، حمایت از محیطزیست و توسعه پایدار. دانشکده شهید مفتح، همدان.
11
سرهنگ زاده، ج.؛ یاوری، ا.ر.؛ همامی، م.ر.؛ جعفری، ح.ر. و شمس اسفندآباد، ب.، 1392. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش (Ovis orientalis) با استفاده از رویکرد تحلیل عامل آشیان بوم شناختی در منطقه حفاظت شده کوه بافق. پژوهش های محیط زیست. سال 4، شماره 8، صفحات 169 تا 182.
12
عفتی، ن.؛ منصوری، ج.؛ دهداردرگاهی، م. و شمس اسفند آباد.، 1391. تهیه نقشه مطلوبیت زیستگاه بهاره و پاییزه قوچ و میش اوریال (orientalisarkal) در پارک ملی سالوک. اولین کنفرانس ملی راهکارهای دستیابی به توسعه پایدار در بخش های کشاورزی، منابع طبیعی و محیط زیست.
13
علیزاده احمدآباد، ز.؛ نادری، س.؛ سعادت علی قیالو، ن.؛ اسماعیلی، ح.ر. و ولوی، ح.، 1394. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه پاییزه قوچ ومیش در پارک ملی بمو براساس روش حداکثر آنتروپی. دومین همایش ملی تغییرات اقلیمی و مهندسی توسعه پایدار کشاورزی و منابع طبیعی، تهران.
14
مروتی، م.؛ کابلی، م.؛ پناهنده، م.؛ سرباز، م. و احمدیان، ش.، 1396. مدل سازی زیستگاه یوزپلنگ آسیایی (Acinonyx jubatus venaticus) تحت تأثیر تغییرات اقلیمی در ایران با استفاده از نرم افزار MAXENT. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 1، صفحات 13 تا 20.
15
مروتی، م.؛ کرمی، م.؛ کابلی، م.، روستا، ز. و شرکائی، م.ج.، 1393. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش (Ovis orientalis) مهم ترین طعمه یوزپلنگ آسیایی (Acinonyx jubatus venaticus) با استفاده از روش حداکثر آنتروپی در پناهگاه حیات وحش دره انجیر در استان یزد. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 6، شماره 4، صفحات 135 تا 149.
16
ملکی نجف آبادی،س.؛همامی،م.ر. وسلمان ماهینی، ع.، 1389. تعیین مطلوبیت زیستگاه قوچ ومیش اصفهانی (Ovis orientalis isphahanica) در پناهگاه حیات وحش موته با استفاده از روش تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی. نشریه محیط زیست طبیعی، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 63، شماره 3، صفحات 279 تا 290.
17
ملکی نجف آبادی، س.؛ همامی، م.ر.؛ سلمان ماهینی، ع. و راهداری، م.، 1389. استفاده از سامانه های اطلاعات جغرافیایی جهت مدیریت زیستگاه حیات وحش: مطالعه موردی قوچ ومیش اصفهانی (Ovis orientalis isphahanica) در پناهگاه حیات وحش موته. همایش ملی ژئوماتیک.
18
Baasch, D.M.; Tyre, A.J.; Millspaugh, J.J.; Hygnstrom, S.E. and Vercauteren, K.C., 2010. An evaluation of three statistical methods used to model resource selection. Ecological Modelling. Vol. 221, pp: 565-574.
19
Bassi, E.; Willis, S.G.; Passilongo, D.; Mattioli, L. and Apollonio, M., 2015. Predicting the Spatial Distribution of Wolf (Canis lupus) Breeding Areas in a Mountainous Region of Central Italy. PLoS One. Vol. 10.
20
Ciuti, S.; Pipia, A,; Grignolio, S,; Ghiandai, F. and Apollonio, M., 2009. Space use, habitat selection and activity patterns of female Sardinian mouflon (Ovis orientalis musimon) during the lambing season. Eur J Wildl Res. Vol. 55, pp: 589-595.
21
Dertien, J.S.; Doherty, P.F.; Bagley, C.F.; Haddix, J.A.; Brinkman, A.R. and Neipert, E.S., 2017. Evaluating dall's sheep habitat use via camera traps. The Journal of Wildlife Management. Vol. 81, pp: 1457-1467.
22
Elith, J.; Phillips, S.J.; Hastie, T.; Dudík, M.; Chee, Y.E. and Yates, C.J., 2011. A statistical explanation of MaxEnt for ecologists. Diversity and Distributions. Vol. 17, pp: 43-57.
23
Giovanelli, J. G. R.; de Siqueira, M. F.; Haddad, C. F. B. and Alexandrino, J., 2010. Modeling a spatially restricted distribution in the Neotropics: How the size of calibration area affects the performance of five presence-only methods. Ecological Modelling. Vol. 221, pp: 215-224.
24
Guisan, A. and Zimmermann, N.E., 2000. Predictive habitat distribution models in ecology. Ecological Modelling. Vol. 135, pp: 147-186.
25
Hoffman, J.D.; Narumalani, S.; Mishra, D.R.; Merani, P. and Wilson, R.G., 2008. Predicting Potential Occurrence and Spread of Invasive Plant Species along the North Platte River, Nebraska. Invasive Plant Science and Management. Vol. 1, pp: 359-367.
26
IUCN Red List of Threatened Species. 2008. Available at: http://www.iucnredlist.org.
27
Karsch, R.C.; Cain, J.W.; Rominger, E.M. and Goldstein, E.J., 2016. Desert Bighorn Sheep Lambing Habitat: Parturition, Nursery, and Predation Sites. The Journal of Wildlife Management. pp: 1-12.
28
Leung, B.; Lodge, D.M.; Finnoff, D.; Shogren, J.F.; Lewis, M.A. and Lamberti, G., 2002. An ounce of prevention or a pound of cure: bioeconomic risk analysis of invasive species. Proc Biol Sci. Vol. 269, pp: 2407-2413.
29
Levins, R., 1966. The strategy of model building in population biology. American scientist. Vol. 54, No. 4, pp: 421-431.
30
Martínez, I.; Carreño, F.; Escudero, A. and Rubio, A., 2006. Are threatened lichen species well-protected in Spain? Effectiveness of a protected areas network. Biological Conservation. Vol. 133, pp: 500-511.
31
Ottaviani, D.; Lasinio, G.J. and Boitani, L., 2004. Two statistical methods to validate habitat suitability models using presence-only data. Ecological Modelling. Vol. 179, pp: 417-443.
32
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological Modelling. Vol. 190, pp: 231-259.
33
Phillips, S.J.; Dudık, M. and Schapire, R.E., 2004. A maximum entropy approach to species distribution modeling. In: Proceed of the 21st Int. conf. on Machine Learning, AcM Press, New York. pp: 655-662.
34
Soberón, J. and Peterson, A.T., 2005. Interpretation of models of fundamental ecological niches and species’ distributional areas. Biodiversity Informatics. Vol. 2, pp: 1-10.
35
Toor, M.L.; Jaberg, C. and Safi, K., 2011. Integrating sex-specific habitat use for conservation using habitat suitability models. Animal Conservation. Vol. 14, pp: 512-520.
36
Yeganeh Keya, Z.; Faryadi, S.; Yavari, A.; Kamali, Y. and Shabani, A.A., 2016. Habitat Suitability & Connectivity of Alborz Wild Sheep in the East of Tehran, Iran. Open Journal of Ecology. Vol. 6, pp: 325-342.
37
Zaniewski, A.E.; Lehmann, A. and McC. Overton, J., 2002. Predicting species spatial distributions using presence only data: a case study of native New Zealand ferns. Ecological Modelling. Vol. 157, pp: 261-280.
38
ORIGINAL_ARTICLE
نقش حفاظتی عصاره رازیانه بر کیفیت اسپرم منجمد یخ -گشایی شده قوچ قزل
با کمک انجماد منی میتوان اسپرم را برای مدت طولانی ذخیره کرد، اما تغییرات بهوجود آمده در طی انجماد منی میتواند باعث تنش اکسیداتیو شده و باعث کاهش قدرت باروری آن گردد. هدف از مطالعه حاضر بررسی تاثیر عصاره آبی گیاه رازیانه بر پارامترهای کیفی اسپرم قوچ بعد از فرآیند انجماد-یخگشایی میباشد. برای این منظور از 5 رأس قوچ قزل با سن 4-3 ساله هفتهای 2بار برای مدت 4هفته اسپرمگیری شد. نمونههای منی در هر بار پس از اطمینان از کیفیت لازم باهم مخلوط شدند. تیمارهای آزمایشی شامل 7 سطح عصاره رازیانه (شامل 0، 2، 4، 6، 8، 10 و 12 میلیلیتر بر دسیلیتر رقیقکننده) بودند که بر نمونههای منی رقیق شده افزوده شدند. نمونهها برای مدت3 هفته در ازت مایع انجماد و نگهداری شدند. پس از یخگشایی فراسنجههای حرکتی اسپرم، یکپارچگی غشای پلاسمایی و پراکسیداسیون لیپیدهای غشایی اسپرم مورد ارزیابی قرار گرفتند. آنالیزآماری نشان داد که عصاره رازیانه با اثرات آنتیاکسیدانی باعث کاهش اکسیداسیون لیپیدی غشای اسپرم در تیمارهای آزمایشی شد که در این ارتباط در گروه 12میلیلیتر کمترین غلظت مالون دیآلدهید مشاهده شد که نسبت به گروه شاهد تفاوت معنیدار داشت (0/05>P). بررسی فراسنجههای زندهمانی، یکپارچگی غشایی و پارامترهای حرکتی حاکی از آن بود که تیمار 6 میلیلیتر نسبت به سایر گروههای آزمایشی بهطور معنیداری باعث بهبودی شده است (0/05>P). بهنظر میرسد که بهطورکلی میتوان از خاصیت آنتیاکسیدانی رازیانه جهت کاهش استرس اکسیداتیو پس از انجماد در اسپرم قوچ استفاده کرد و برای این منظور غلظت 6 میلیلیتر عصاره در دسیلیتر رقیقکننده مناسب است.
http://www.aejournal.ir/article_82451_c6582c9d7fa54f4ad34d6ca1b7697c5c.pdf
2018-12-22
83
90
استرس اکسیداتیو
انجماد اسپرم
قوچ
امیر
کریمی
karimi.amir@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی اهر، دانشگاه تبریز
LEAD_AUTHOR
مقصود
بشارتی
m_besharati@hotmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی اهر، دانشگاه تبریز
AUTHOR
ذبیح اله
نعمتی
zn.nemati@yahoo.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی اهر، دانشگاه تبریز
AUTHOR
شهباززاده، ر.؛ دقیقکیا، ح.؛ مقدم،غ.ع.؛ دهقان،غ.؛ حسینخانی، ع. و اشرفی،ا.، 1394. تاثیر سطوح مختلف عصاره الکلی مرزه سهندی بر کیفیت اسپرم منجمد-یخ گشایی شده گاو هلشتاین. پژوهشهای علوم دامی. دوره 25، شماره 1، صفحات 13 تا 24.
1
فرهادی، ر.؛ دقیقکیا، ح.؛ حسینخانی، ع.؛قاسمیپناهی، ب.؛ دهقان، غ.و اشرفی،ا.، 1394. اثرعصاره اتانولی گیاه مرزنجوش بر فراسنجههای کیفی و غلظت مالون دی آلدهید اسپرم منجمد یخ گشایی شده گاو هلشتاین. پژوهشهای علوم دامی. دوره 25، شماره 1، صفحات 1 تا 11.
2
فرهادی، ر.؛ دقیقکیا، ح. و اشرفی،ا.،1394. تأثیر عصاره اتانولی مریم گلی سهندی بهعنوان آنتیاکسیدان طبیعی بر پارامترهای کیفی اسپرم منجمد-یخ گشایی شده گاو هلشتاین. پژوهشهای تولیدات دامی. دوره 6، شماره 12، صفحات 79 تا 86.
3
زنگنه، ک.؛ فاخری، ب.؛ اروجی، ف.؛ افضلیفر، ا. و مخدومی، م.، 1395. بررسی تنوع ژنتیکی اکوتیپهایی از گیاه دارویی رازیانه (Foeniculum vulgare) ایران با استفاده از نشانگر مولکولی ISSR. مجله زیستفناوری گیاهان دارویی. دوره 2، شماره 4، صفحات 10 تا 19.
4
Alvarez, J.G. and Storey, B.T., 1992. Evidence for increased lipid peroxidative damage and loss of superoxide dismutase activity as a mode of sublethal cryodamage to human sperm during cryopreservation. Journal of Andrology. Vol. 13, pp: 232-241.
5
Arabshahi-Delouee, S. and Urooj, A., 2007. Antioxidant properties of various solvent extracts of mulberry (Morus indica L.) leaves. Food Chemistry. Vol. 102, pp: 1233-1240.
6
Baliga, M.S.; Jagetia, G.C.; Rao, S.K. and Babu, K., 2003. Evaluation of nitric oxide scavenging activity of certain spices in vitro: a preliminary study. Nahrung. Vol. 47, pp: 261-264.
7
Barros, L.; Heleno, S.A.; Carvalho, A.M. and Ferreira, I.C., 2009. Systematic evaluation of the antioxidant potential of different parts of Foeniculum vulgare mill. from portugal. Food Chemical Toxicology. Vol. 47, pp: 2458-2464.
8
Batista, M.; Niño, T.; Alamo, D.; Castro, N.; Santana, M.; González, F.; Cabrera, F. and Gracia, A., 2009. Successful artificial insemination using semen frozen and stored by an ultrafreezer in the Majorera goat breed. Theriogenology. Vol. 71, pp: 1307-1315.
9
Blom, E., 1950. A one minute live-dead sperm stain by means of Eosin-Nigrosin. Fertility and Sterility. Vol. 1,
10
pp: 176-177.
11
Bucak, M.N.; Ateşşahin A.; Varişli, O.; Yüce, A.; Tekin, N. and Akçay, A., 2007. The influence of trehalose, taurine, cysteamine and hyaluronan on ram semen: Microscopic and oxidative stress parameters after freeze-thawing process. Theriogenology. Vol. 67, pp: 1060-1067.
12
Choi, E.M. and Hwang, J.K., 2004. Antiinflammatory, analgesic and antioxidant activities of the fruit of Foeniculum vulgare. Fitoterapia. Vol. 75, pp: 557-565.
13
Çoyan, K.; Başpınar, N.; Bucak, M.N.; Akalın, P.P.; Ataman, M.B.; Omür, A.D.; Güngör, S.; Küçükgünay, S.; Ozkalp, B. and Sarıözkan, S., 2010. Influence of methionine and dithioerythritol on sperm motility, lipid peroxidation and antioxidant capacities during liquid storage of ram semen. Research in Veterinary Science. Vol. 89, pp: 426-431.
14
De Martino, L.; De Feo, V.; Fratianni, F. and Nazzaro, F., 2009. Chemistry, antioxidant, antibacterial and antifungal activities of volatile oils and their components. Natural Product Communications. Vol. 4, pp: 1741-1750.
15
Diao, W.; Hu, Q.; Zhang, H. and Xu, J., 2014. Chemical composition, antibacterial activity and mechanism of action of essential oil from seeds of fennel (Foeniculum vulgare Mill.) Food Control. Vol. 35, No. 1, pp: 109-116.
16
Douglas, T.C. and Kenneth, I.A., 2013. Spermatogenesis, Methods and Protocols. Springer Science. pp: 14-15.
17
Draper, H.H. and Hadley, M., 1990. Malondialdehyde determination as index of lipid peroxidation. Methods in Enzymology. Vol. 186, pp: 421-431.
18
Gharagozloo, P. and Aitken, R.J., 2011. The role of sperm oxidative stress in male infertility and the significance of oral antioxidant therapy. Human Reproduction. Vol. 26, pp: 1628-1640.
19
Handa, S.S.; Khanuja, S.P.S.; Longo, G. and Rakesh, D.D., 2008. Extraction Technologies for Medicinal and Aromatic Plants, United Nations Industrial Development Organization and the International Centre for Science and High Technology. 22 p.
20
Jensen, T.; Skakkebæk, N.; Jørgensen, N.; Jensen, M. and Juul. A., 2011. Antioxidants and male subfertility-a survey of a Cochrane review. Ugeskrift for laeger. Vol. 173, 3253 p.
21
Malo, C.; Gil, L.; Gonzalez, N.; Martínez, F.; Cano, R.; de Blas, I. and Espinosa E., 2010. Anti-oxidant supplementation improves boar sperm characteristics and fertility after cryopreservation: comparison between cysteine and rosemary (Rosmarinus officinalis). Cryobiology. Vol. 61, pp: 142-147.
22
Malo, C.; Gil, L.; Cano, R.; Gonza´lez, N. and Lun˜o, V., 2011. Fennel (Foeniculum vulgare) provides antioxidant protection for boar semen cryopreservation. Andrologia. Vol. 44, pp: 710-715.
23
Miguel, M.G.; Cruz, C.; Faleiro, L.; Simoes, M.T.; Figueiredo, A.C.;Barroso, J.G. and Pedro, L.G., 2010. Foeniculum vulgare essential oils: chemical composition, antioxidant and antimicrobial activities. Natural Product Communications. Vol. 5, pp: 319-328.
24
Nickavar, B. and Abolhasani, F.A., 2009. Screening of antioxidant properties of seven umbelliferae fruits from iran. Pakistan Journal of Pharmaceutical Sciences. Vol. 22, pp: 30-35.
25
Ozkan, M.M. and Chalchat, J.C., 2006. Effect of collection time on chemical composition of the essential oil of Foeniculumvulgare subsp. Piperitum growing wild in Turkey. European Food ResearchandTechnology. pp: 224-279.
26
Pinho, R.A.; Andrades, M.E.; Oliveira, M.R.; Pirolo, A.C.; Zago, M.S.; Silveira, P.C.L.; Dal-Pizzol, F. and Moreira, J.C.F., 2006. Imbalance in SOD/CAT activities in rat skeletal muscles submitted to treadmill training exercise. Cell Biology International. Vol. 30, pp: 848-853.
27
Roca, J.; Gil M.A.; Hernandez, M.; Parrilla, I.; Vazquez, J.M. andMartinez, E.A., 2004. Survival and fertility of boar spermatozoa after freeze-thawing in extender supplemented with butylated hydroxytoluene. Journal of Andrology. Vol. 25, pp: 397-405.
28
Ruberto, G.; Baratta, M.T.; Deans, S.G. and Dorman, H.J., 2000. Antioxidant and antimicrobial activity of Foeniculum vulgare and Crithmum maritimum essential oils. Planta Medica. Vol. 66, pp: 687-693.
29
Thomson, L.; Fleming, S.D.; Aitken. R.J.; De Iuliis, G.N.; Zieschang, J.A. and Clark, A.M., 2009. Cryopreservation-induced human sperm DNA damage is predominantly mediated by oxidative stress rather than apoptosis. Human Reproduction. Vol. 24, pp: 2061-2070.
30
Velioglu, Y.S.; Mazza, G.; Gao, L. and Oomah, B.D., 1998. Antioxidant activity and total phenolics in selected fruits, vegetables, and grain products. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 46, pp: 4113-4117.
31
Watson, P., 2000. The causes of reduced fertility with cryopreserved semen. Animal Reproduction science. Vol. 60, pp: 481-492.
32
Zanghaneh, Z.; Zhandi, M.; Zareh Shahneh, A.; Najafi, A.; Nabi, M.M. and Mohammadi-Sangcheshmeh, A., 2013. Does Rosemary aqueous extract improve buck semen cryopreservation? Small Ruminant Research. Vol. 114, No. 1, pp: 120-125.
33
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات تزریق PGF2αوeCG پس ازسیدربرداری بر عملکرد تولیدمثلی میش های آتابای در خارج از فصل تولیدمثل
کارایی سیدرگذاری در هم زمان سازی فحلی میش توام با سایر هورمون ها ازجمله eCG و PGF2α رضایت بخش توصیه شده است. به این منظور اثرات تزریق PGF2α وeCG پس از دو زمان سیدربرداری بر عملکرد تولیدمثلی میش در خارج از فصل تولیدمثل با استفاده از تعداد 48 راس میش آتابای در قالب طرح کاملاً تصادفی و 4 گروه آزمایشی 12 راسی ارزیابی شدند. تیمارهای آزمایش شامل (1) 12 روز سیدرگذاری و سپس تزریق PGF2α، (2) 12 روز سیدرگذاری و سپس تزریق هورمون eCG (3) 7 روز سیدرگذاری و سپس تزریق PGF2α، (4) 7 روز سیدرگذاری و سپس تزریق هورمون eCG بودند. تفاوت معنی داری بین تیمارها از نظرنسبت بره نر به ماده، وزن تولد بره و وزن از شیرگیری مشاهده نشد (0/05<P). بروز فحلی در تیمارها به ترتیب 100، 75، 58/33 و 50 درصد بود. بالاترین آن متعلق به تیمار اول با تفاوت معنی دار نسبت به سایر تیمارها بود (0/05>P). نرخ زایش به ترتیب 88/33، 88/88، 100 و 100 درصد بود که مقدار آن در تیمارهای سوم و چهارم به طور معنی داری بالاتر از تیمار اول بود. نرخ بره زایی در بین تیمارها به ترتیب 130، 100، 128 و 120 درصد برآورد شد. نرخ دوقلوزایی نیز در بین تیمارهای اول تا چهارم به ترتیب 30، صفر، 28 و 20 درصد بود. کم ترین میزان نرخ بره زایی و نرخ دوقلوزایی مربوط به تیمار دوم بود که اختلاف معنی داری با سایرین داشت (0/05>P). نتایج نشان داد که در سیدر گذاری 12 روزه، استفاده از PGF2α در مقایسه با eCG از عملکرد بهتری داشت و در سیدرگذاری 7 روزه، تفاوت معنی داری در استفاده از PGF2α و eCG مشاهده نشد، هم چنین استفاده از eCG پس از سیدرگذاری کوتاه مدت (7 روز) در مقایسه با 12 روز تاثیر بیش تری در بهبود نرخ زایش، نرخ بره زایی و نرخ دوقلوزایی میش های نژاد آتابای داشت.
http://www.aejournal.ir/article_85643_e0d242dffa7dcbdd93b0fe51a83d671d.pdf
2018-12-22
91
98
هم زمان سازی فحلی
سیدر
PGF2α
ECG
میش آتابای
حکیم
حاجی قربانی
hajighorbani@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
AUTHOR
سیدحسین
طباطبایی
tabavet@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
AUTHOR
ناصر
کریمی
naser.karimi@hotmail.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
LEAD_AUTHOR
بابایی کافی آبادی، م.؛ صادقی پناه، ح. و کریمی، ک.، 1393. زمان بندی تزریق eCG در برنامه هورمونی ایجاد جفت پذیری در میش های ترکی- قشقایی به هنگام آنستروس عمیق. نشریه پژوهی در نشخوارکنندگان. جلد 2، شماره 2، صفحات 113 تا 120.
1
بدخشان، ی.؛ جعفری آهنگری، ی.؛ صمدی، ف. و حیدری، ا.ف.، 1388. اثر دوزهای مختلف هورمون eCG بر پارامترهای تولید مثلی بز کرکی رائینی. مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی. جلد 13، ویژهنامه 2، صفحات 123 تا 128.
2
خالداری، م.؛ تاجیک، پ.؛ افضل زاده، ا. و فرزین، ن.، 1383. کارایی سیدر و هورمون گنادوتروپین کوریونی مادیان بر ه مزمان کردن فحلی و درصد دوقلوزایی میشهای نژاد زندی در فصل جفت گیری. مجله دامپزشکی دانشگاه تهران. دوره 59، شماره 2، صفحات 141 تا 145.
3
صادقی پناه، ا.؛ مسعودی، ر.؛ نائیجیان، ح.ر. و اکبری شریف، ا.، 1394. اثر هورمون های eCG، PGF2α و GnRH بر بازده تولیدمثل میش های زندی در فصل تولیدمثل. مجله علوم دامی ایران. دوره 46، شماره 2، صفحات 189 تا 196.
4
صارمی نژاد، پ.؛ طباطبایی وکیلی، ص.؛ ممویی، م.؛ میرزاده، خ. و بوجارپور، م.، 1394. وضعیت بروز فحلی و غلظت هورمون های استروژن و پروژسترون سرم خون میش های عربی هم زمان شده با سیدر در خارج از فصل تولیدمثل. نشریه پژوهش های علوم دامی. جلد 25، شماره 1، صفحات 151 تا 162.
5
صمدی، ف. و قره باش، آ. م.، 1378. بررسی تاثیر گنادوتروپین سرم مادیان آبستن و گنادوتروپین جفتی انسان بر فعالیت تولیدمثلی گوسفندان دالاق. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. سال 6، شماره 3، صفحات 14 تا 18.
6
قاسمیان، س.؛ مرادی شهربابک، س.؛ شاکری، س.ح. و میمندی نیا، پ.، 1387. سومین کنگره علوم دامی کشور. دانشگاه فردوسی مشهد.
7
لطفی، م.؛ کهرام، ح.؛ زارع شحنه، ا،؛ ژندی، م. و اکبری شریف، ع.، 1392. اثر توام و جداگانه گونادوتروپین eCG و FSH بر فراسنجه های تولیدمثلی در میش های نژاد زندی. مجله دامپزشکی ایران. دوره 9، شماره ، صفحات 98 تا 104.
8
Ali, A., 2007. Effect of time of eCG administration on follicular response and reproductive performance of FGA treated Ossimi ewes. Small Ruminant Research. Vol. 72, pp: 33-37.
9
Barrett, D.; Bartlewski, P.; Batista-Arteaga, M.; Symington, A. and Rawlings, N., 2004. Ultrasound and endocrine evaluation of the ovarian response to a single dose of 500 IU of eCG following a 12-day treatment with progestogen-releasing intravaginal sponges in the breeding and nonbreeding seasons in ewes. Theriogenology. Vol. 61, pp: 311-327.
10
Carlson, K.M.; Pohl, H.A.; Maracek, J.M.; Muser, R.K. and Wheaton, J.E., 1989. Evaluation of progesterone controlled internal drug release dispenser for synchronozation of estrus in sheep. Animal Reproduction Science. Vol. 18, pp: 205-218.
11
Cline, M.A.; Ralston, J.N.; Seals, R.C. and Lewis, G.S., 2001. Intervals from norgestoment withdraval and injection of equine chorionic gonadotropin or PG600 to estrus and ovulation in ewes. Journal of Animal Science. Vol. 79, pp: 589-594.
12
Husein, M. and Ababneh, M., 2008. A new strategy for superior reproductive performance of ewes bred out-of season utilizing progestagen supplement prior to withdrawal of intravaginal pessaries. Theriogenology. Vol. 69, pp: 376-383.
13
Husein, M.; Bailey, M.; Ababneh, M.; Romano, J.; Crabo, B. and Wheaton, J., 1998. Effect of eCG on the pregnancy rate of ewes transcervically inseminated with frozen-thawed semen outside the breeding season. Theriogenology. Vol. 49, pp: 997- 1005.
14
Inskeep, K.; Knights, M. and Ramboldt, T., 2010. Out of season breeding using the EAZI-BREED CIDR-G in ewes. https://www.apsc.vt.edu/extension/sheep/programs/11proceedings CIDR.pdf.
15
Kermani Moakhar, H.; Kohram, H.; Zareh Shahneh, A. and Saberifar, T., 2011. Ovarian response and pregnancy rate following different doses of eCG treatment in Chall ewes. Small Ruminant Research. Vol. 102, pp: 63-67.
16
Luther, J.S.; Grazul–Bilshka, A.T.; Reynolds, L.P.; Navanukraw, C.; Choi, J.T.; Pant, D.; Kirsch, J.D.; kraft, K.C.; Weigl, R.; Limesand, W. and Redmer, D.A., 2002. Effects pregnant mare serum gonadotropin on the incidence of estrus and pregnancy rates in ewe's artificial insemination during the breeding season. North Dakota State University, Fargo, ND, USA.
17
Menchaca, A. and Rubianes, E., 2004. New treatments associated with timed artificial insemination in small ruminants. Reproduction, Fertility and Development. Vol. 16, pp: 403-413.
18
Menzer, C. and Schams, D., 1979. Radioimmunoassay for PMSG and its application to in-vivo studies. Journal of Reproduction and Fertility. Vol. 55, pp: 339-345.
19
Moghaddam, G.H.; Olfati, A.; Daghigh Kia, H. and Rafat, S.A., 2012. Study of reproductive performance of crossbred ewes treated with GnRH and PMSG during breeding season. Iranian Journal of Applied Animal Science. Vol. 2, No. 4, pp: 351-356.
20
Pintado, B.; Gutierrez-Adan A. and Llano, B.P., 1998. Superovulatory response of Murciana goats to treatments based on PMSG/anti-PMSG or combined FSH/PMSG administration. Theriogenology. Vol. 50, pp: 357-364.
21
Quintero-Elisea, J.A.; Macías-Cruz, U.; Álvarez Valenzuela, F.D.; Correa-Calderón, A.; González-Reyna, A.; Lucero-Magaña, F.A.; Soto-Navarro, Se.A. and Avendaño-Reyes, L., 2011. The effects of time and dose of pregnant mare serum gonadotropin (PMSG) on reproductive efficiency in hair sheep ewes. Tropical Animal Health and Production. Vol. 43, pp: 1567-1573.
22
Ramsey, W.S. and Satterfield, M.C., 2003. The effect of induced ovulation on pregnancy rate in lapaeascopically artificial insemination (LAI) ewe using frozen semen. Texas University System, Animal Science Department, College Station.
23
Wheaton, J.E.; Carlson, K.M.; Windels, H.F. and Johnstin, L.J., 1992. CIDR: A new progesterone-releasing intravaginal device for induction of estrus and cycle control in sheep and goast. Small Ruminnant Research. Vol. 16, pp: 27-36.
24
Wildeus, S., 2000. Current concepts in cynchronization of estrous: sheep and goats. Journal of Animal Science. Vol. 77, pp: 1-14.
25
Zeleke, M.; Greyling, J.; Schwalbach, L.; Muller, T. and Erasmus, J., 2005. Effect of progestagen and PMSG on oestrous synchronization and fertility in Dorper ewes during the transition period. Small Ruminant Research. Vol. 56, pp: 47-53.
26
ORIGINAL_ARTICLE
تحلیل اقتصادی گوسفند مغانی در طول چرخه تولید سالانه در دو سیستم مختلف پرورشی
در این تحقیق خصوصیات تولیدی، تولیدمثلی، مدیریتی و اقتصادی حاصل از رکودگیری گله گوسفند مغانی در طول یک چرخه تولید سالانه برای شناسایی عملکرد صفات و تجزیه و تحلیل اقتصادی دو سیستم پرورشی روستایی و عشایری در استان اردبیل مورد استفاده قرار گرفت. به منظور برآورد ارزش اقتصادی صفات، مدلهایی که توصیف کننده شرایط تولیدی و تولیدمثلی در سطح پرورش گوسفند نژاد مغانی در سیستم روستایی و عشایری باشد تشکیل و ارزش های اقتصادی صفات با استفاده از نرمافزار MATLAB محاسبه گردید. اثر افزایش یک واحد تغییر در میانگین صفات بر درآمدها و هزینههای سیستمهای تولید و در نتیجه ارزش اقتصادی نشان داد که در هر دو سیستم در صورت افزایش میانگین صفات نرخ زنده مانی میش، میزان آّبستنی، تعداد دفعات زایش در سال، وزن پشم و وزن شیر باعث افزایش درآمد و درصورت افزایش میانگین وزن جایگزین باعث افزایش هزینه و درنهایت کاهش درآمد میگردد. در روش پرورش عشایری و روستایی ضرایب اقتصادی نسبی همه صفات به جز صفت وزن جایگزین مشابه با اکثر تحقیقات صورت گرفته مثبت برآورد گردید. آنالیز اقتصادی سیستم نشان داد که در شرایط روستایی درآمدها، هزینهها و سود حاصل به ازای هر رأس میش در سال به ترتیب 3864702/32، 3293308/57 ،571393/75 ریال در شرایط عشایری درآمدها، هزینه ها و سود سیستم به ترتیب 8134659/38 ، 11072563/71 و 2937904/33 ریال برآورد گردید. بهمنظور بررسی اثرات متغیرهای اقتصادی و زیستی بر ارزش اقتصادی، آنالیز حساسیت انجام گردید. تحلیل هزینه و فایده به ازای هر رأس میش مولد تحت سیستم روستایی انجام شد و بیش ترین سهم هزینه مربوط به هزینه کارگری و بیش ترین سهم درآمد مربوط به فروش وزن زنده برهها بود. درحالی که در گوسفندان تحت سیستم عشایری، بیش ترین هزینه مربوط به هزینه تغذیه و بیش ترین درآمد مربوط به وزن زنده هنگام فروش بود. هم چنین برای بررسی تغییرات عوامل موثر بر بهره وری اقتصادی به عنوان شاخص عملکرد گله برخی از پارامترهای مدل به میزان 50 درصد در جهت مثبت و منفی تغییر داده شد نتایج نشان داد که در صورت تغییر صفات نرخ زنده مانی میش، میزان آبستنی و وزن شیر در جهت مثبت شاخص بهره وری افزایش و درصورت افزایش وزن جایگزین در جهت مثبت شاخص بهره وری کاهش مییابد.
http://www.aejournal.ir/article_85667_e8fac017f0b4ca294330b7e866287e11.pdf
2018-12-22
99
106
گوسفند مغانی
ارزیابی اقتصادی
سیستم عشایری
سیستم روستایی
رضا
سید شریفی
reza_seyedsharifi@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
LEAD_AUTHOR
هاجر
طاهر سولا
hajartahersula@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
نعمت
هدایت ایوریق
hedayatuma@gmail.com
3
گروه علوم دامی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
جمال
سیف دواتی
jseifdavati@yahoo.com
4
گروه علوم دامی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
حسین
عبدی بنمار
abdibenemar@uma.ac.ir
5
گروه علوم دامی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
آزاده
بوستان
boustan_62@yahoo.com
6
گروه علوم دامی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
باقری،م.،1393. تجزیه و تحلیل اقتصادی پرورش میش در عشایر استان چهارمحال بختیاری. مجله تحقیقات دام و طیور. شماره 1، صفحات 75 تا 85.
1
ساورسفلی، س.؛ عباسی، م.ع. و مختارپور، غ.م.، 1394. تعیین ضرایب اقتصادی صفات زندهمانی، تولیدی و تولیدمثلی گوسفندان زل در سیستم پرورش غیرمتمرکز. نشریه علوم دامی (پژوهش و سازندگی). شماره 108، صفحات 195 تا 202.
2
کلانترنیستانکی،م.،1384. برررسی صفات تولیدمثلی و شاخص های اقتصادی گله های گوسفند و بز استان قم. سمینار پژوهشی گوسفند و بز کشور، کرج.
3
موسی زاده، ل.؛ شادپرور، ع.ا. و اسکندری نسب، م. پ.، 1391. برآورد ارزش اقتصادی صفات تولیدی و تولیدمثلی گوسفند افشاری در سیستم روستایی. نشریه پژوهش های علوم دامی. جلد 22، شماره 2، صفحات 35 تا 44.
4
نصرتی، م.، 1377. برآورد پارامترهای ژنتیکی و فنوتیپی وزن بدن در سنین مختلف و تولید پشم سالیانه در گوسفندان مغانی. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه تبریز.
5
وطن خواه، م. 1384. اصلاح نژاد گوسفند لری بختیاری در سیستم روستایی: تعیین مدل مناسب. پایان نامه دوره دکتری. دانشکده کشاورزی. دانشگاه تهران.
6
وطن خواه، م.؛ مرادی شهربابک، م.؛ نجاتی جوارمی، ا.؛ واعظ ترشیزی، ر. و میرائی آشتیانی، س.ر.، 1386. ارایه مدل مناسب اصلاح نژاد گوسفند لری بختیاری در سیستم روستایی. گزارش نهایی طرح تحقیقاتی، موسسعه تحقیقات علوم دامی کشور. 116 صفحه.
7
Dekkers, J.C.M., 2003. Design and Economics of Animal Breeding Strategies. Iowa State University, Iowa, USA.
8
Dekkers, J.C.M.;Birke, P.V. and Gibson, J.P., 1995. Optimum linear selection indexes for multiple generation objectives with nonlinear profit functions. Journal of Animal Science. Vol. 610, pp: 75-165.
9
Gibson, J.P., 1995. An introduction to the design and economics of amimal breeding strategies. Guleph, Ontario, Canada.
10
Harris, D.L., 1970. Breeding for efficiency in livestock production: Defining the economic objectives. Journal of Animal Science. Vol. 30, pp: 860-865.
11
Jones, H.E.; Amer, P.R.; Lewis, R.M. and Emmans, G.S., 2004. Economic values for changes in carcass lean and fat weight at a fixed age for terminal sire breeds of sheep in the UK. J of Livestock Production Science. Vol. 89, pp: 1-17.
12
Kosgey, I.S.; Van Arendonk, J.A.M. and Baker, R.L., 2003. Economic values for traits of meat sheep in medium to high production potential areas of the tropics. Journal of Small Ruminant Research. Vol. 50, pp: 187-202.
13
Kosgey,I.S.;VanArendonk,J.A.M.andBaker, R.L., 2004. Economic values for traits in breeding objectives for sheep in the tropics: impact of tangible and intangible benefits.
14
Lobo, R.N.B.; Pereira, I.D.C.; Faco, O. and McManus, C., 2011. Economic values for production traits of Morada Nova Meat sheep in a pasture based production system semi-arit Brazil. J of Small Ruminant Research. Vol. 96, pp: 93-100.
15
Ponzoni, R.W. and Newman, S., 1989. Developing breeding objective for Australian beef cattle production. Journal of Animal Production. Vol. 49, pp: 35-47.
16
Smith, C.; James, J. and Brascamp, E.W., 1986. On the derivation of economic weights in livestock improvement. Journal of Animal Production. Vol. 43, pp: 545-551.
17
Wolfova,M.; Wolf, J.; Kvapilik, J. and Kica, J., 2007. Selection for profit in cattle: I. Economic weights for purebred dairy cattle in the Czech Republic. Journal of Dairy Science. Vol. 90, pp: 2442-2455.
18
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر تغذیه کمکی بر کاهش وزن بره های مغانی در هنگام کوچ
یکی از مسایل و مشکلات گله های عشایری استان اردبیل افت وزن گوسفندان بالاخص برههای مغانی در حین کوچ میباشد، با عنایت به جمعیت قابل توجه نژاد مغانی، طرحی در قالب کاملا تصادفی با تکرار نامساوی در هر تیمار انجام گرفت. تیمارهای آزمایشی شامل کوچ پیاده بدون تغذیه کمکی (شاهد)، کوچ پیاده با تغذیه کمکی، کوچ ماشینی بدون تغذیه کمکی، کوچ ماشینی با تغذیه کمکی و کوچ ماشینی در ساعات خنک شبانه بودند. این پژوهش به منظور مشخص کردن مقدار افت وزن و تعیین اثر روش کوچ بر تغییرات وزن بره ها اجرا گردید. تیمارهای مختلف اثر معنیداری بر روی افت وزن برهها داشت (0/05>P)، روش کوچ پیاده بدون تغذیه کمکی با داشتن بیش ترین مقدار افت وزن به ازای هر رأس بره (2/65 کیلوگرم) نسبت به سایر روش ها اختلاف معنی داری را نشان داد (0/05>P). کم ترین مقدار افت وزن در روش کوچ ماشینی با تغذیه کمکی مشاهده گردید (65گرم). مقایسه اقتصادی روشهای مختلف کوچ با روش حداقل هزینه نشان می دهد که کوچ ماشینی توام با تغذیه کمکی نسبت به روش های دیگر سود بیش تری دارد.
http://www.aejournal.ir/article_85668_1db97b777e58697200d906a7a550ede7.pdf
2018-12-22
107
112
تغذیه کمکی
بره مغانی
کاهش وزن
کوچ
اکبر
ابرغانی
akbarabarghani@yahoo.com
1
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان اردبیل(مغان)،سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اردبیل، ایران
AUTHOR
محمود
صحرایی
m.sahraei2009@gmail.com
2
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان اردبیل(مغان)،سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اردبیل، ایران
LEAD_AUTHOR
علی اکبرزاده، ا.، 1379. رابطه بین نظام مالکیت و تخریب مراتع در استان اردبیل. نشریه سازمان مدیریت و برنامهریزی کشور. شماره 286.
1
علی اکبرزاده، ا.؛ نوری، ق. و شریفی، ج.، 1378. مطالعات جامع توسعه اقتصادی، اجتماعی و فرهنگی استان اردبیل. بخش پوشش گیاهی. انتشارات سازمان مدیریت و برنامهریزی استان اردبیل.
2
منعم، م.؛ اسماعیلی راد، ا. و دخانچی، س.، 1367. طرح شناسایی گوسفندان بومی ایران (گوسفند مغانی). مؤسسه تحقیقات علوم دامی کشور. نشریه پژوهشی شماره 57.
3
Blackwood, I. and Hurst, R., 2004. Types for transporting cattle and sheep. New South Wales Departement of Primary Industries: Agriculture. New South Wales Government Agnote DAI-234. pp: 1-11 (Second Edition).
4
Broom, D.M., 2000. Welfare assessment and welfare problem areas during handling and transport. (In: Livestock Handling and Transport. Ed. T. Grandin). CABI Publishing, NewYork, NY. pp: 43-61.
5
Cockram, M.S.; Kent, J.E.; Goddard, P.J.; Waran, N.K.; Jackson, R.E.; Megilp, I.M.; Southall, E.L.; Amory, J.R.; Mcconnell, T.I.; Riordan, T.O. and Wilkins, B.S., 2000. Behavioural and physiological responses of sheep to 16h trasport and a novel environment post-transport. Journal of Veternary. Vol. 159, pp: 139-146.
6
Fuente, J.D.; Sanchez, M.; Perez, C.; Lauzurica, S.; Vieira, C. and Chavarri, E.G., 2010. Physiological response and carcass and meat quality of suckling lambs in relation to transport time and stocking density during transport by road. Journal of Animal Science. Vol. 4, pp: 250-258.
7
Gonyou, H.W., 2000. Behavioural principles of animal handling and transport. (In: Livestock Handling and Transport. Ed. T. Grandin). CABI Publishing, New York, NY. pp: 15-25.
8
Grandin, T., 2000. Recent sheep transport research. (In: Livestock Handling and Transport. Ed. T. Grandin). CABI Publishing, New York, NY. pp: 230-234.
9
Grandin, T., 2001. Perspective on transportation issues; the importance of having physicalley fit cattle and pigs. Journal of Animal Science. Vol. 79, pp: 201-207.
10
Knoweles, T.G.; Warriss, P.D.; Brown, S.N.; Ketin, S.C.; Rhind, S.M.; Edwards, J.E.; Anil, M.H. and Dolan, S.K., 1993. Long distance transport of lamb and the time needed for subseqent recovery. Journal of Veternary. Vol. 133, pp: 286-293.
11
Knoweles, T.G.; Warriss, P.D.; Brown, S.N.; Kestin, S.C.; Edwards, J.E.; Perry, A.M.; Watkins, P.E. and Watkins, A.J., 1996. Effects of feeding, watering and resting intervals on lambs transported by road and ferry to France. Veternary Record. Vol. 139, pp: 335-339.
12
Knoweles, T.G.; Warriss, P.D.; Brown, S.N. and Edwards, J.E., 1998. Effects of stocking density on lambs bening transported by road. Veternary Record. Vol. 142, pp: 503-509.
13
Lemea, T.M.; da Cunha, S.; Titto, E.A.L.; Titto, C.G.; Amadeua, C.C.B.; Netoa, P.F.; Vilela, R.A. and Pereira, A.M.F., 2012. Influence of transportation methods and pre-slaughter rest periods on cortisol level in lambs. Small Ruminant Research. Vol. 107, pp: 8-11.
14
MAFAAEI. 2004. MAF standard for the transport of cattle by sea from New Zeland. Ministry of Agriculture and Forestry Animal Imports and Export, New Zealand Government, Wellington, NZ. pp: 1-9.
15
MAFAWG. 2003. Welfare of Sheep, Goats and Cattle Transported by Truck Within New Zealand. Pocket Guide for Stock Truck Drivers. Ministry of Agriculture and Forestry Animal Welfare Group, MAF Biosecurity Authority, Wellington, NZ. pp. 1-6.
16
Manteca, X., 1998. Neurophysiology and assessment of welfare. Procedindg International Congrees. Meat Science Technology. (Barcelona, Spain). Vol. 44, pp: 146-153.
17
Smith, G.C. and Grandin, V., 1998. Animal handling for productivity, quality and profitability. Presented at the Annual Convention of the American Meat Institute (Philadelphia, PA). Foundation, Animal Handling and Stunning Conference (Kansas City, Mo). pp:1-12.
18
Smith, G.C. and Grandin, T., 1999. The relationship between good handling/ stunning and meat quality. Presnted at the American Meat Institute Foundation, Animal Handling and Stunning Conference (Kansas City, MO). pp: 1-22.
19
Sutherland, M.A.; Bryer, P.J.; Davis, B.L.; Smith, J.F. and Mcglne, J.J., 2012. The combined effects of transport and food and water deprivation on the physiology of breeding age gilts. Livestock Science, Amsterdam. Vol. 144, No. 1-2, pp: 124-131.
20
Tarrant, V. and Grandin, T., 2000. Cattle Transport. (In: Livestock Handling and Transport. Ed. T. Grandin). CABI Publishing, New York, NY. pp: 151-173.
21
VonBorell, E.H., 2001. The biology of strees and its application to livestock housing and transportation assessment. Journal of Animal Science. Vol. 79, pp: 260-267.
22
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اپیدمی لپتوسپیروز در گاوهای استان گلستان طی سال های 1385 لغایت 1386
بیماری لپتوسپیروز یکی از شایع ترین بیماری های مشترک بین انسان و حیوان در سراسر دنیا محسوب می شود که از طریق تماس مستقیم یا غیرمستقیم با ادرار حیوانات آلوده بروز میکند. از آن جایی که در استان گلستان اطلاعات پایه ای در مورد وضعیت بیماری مذکور وجود ندارد، در مطالعه حاضر به بررسی و پایش بیماری لپتوسپیروز پرداخته شد. در همین راستا، از 910 راس گاو در سنین مختلف در سطح استان گلستان نمونه خون تهیه و نمونه ها به روش میکروآگلوتیناسیون مورد بررسی سرولوژی قرار گرفت. اطلاعات به دست آمده با استفاده از نرم افزار SPSS 18 و آزمون کای اسکویر مورد تجزیه و تحلیل آماری قرار گرفت. در نهایت نتایج نشان دادند که از کل نمونه ها تعداد 170 نمونه دارای پاسخ سرمی سرولوژی مثبت بوده که از این تعداد 86 نمونه تنها با یک سرووار واکنش نشان دادند. در تمام نمونه های دارای پاسخ سرمی سرولوژی مثبت، 41/15 درصد با گریپوتیفوزا، 35/89 درصد با سرجروهاردجو، 22/49 درصد با کانیکولا و 0/48 درصد با پومونا واکنش مثبت نشان دادند. هم چنین بیش ترین فراوانی (33/49 درصد) در تیتر 1/400 مشاهده گردید. شایان ذکر است که هیچ یک از نمونه ها علیه سرووار ایکتروهموراژیه تیتر قابل تشخیص نداشت. هم چنین نتایج بررسی آماری اختلاف معنی داری بین فصل و سن و میزان آلودگی نشان نداد.
http://www.aejournal.ir/article_83330_10fb9c2c360d497c8d90e2aa133aebbf.pdf
2018-12-22
113
118
لپتوسپیروز
میکروآگلوتیناسیون
گاو
استان گلستان
پرستو
پورغفور لنگرودی
poorghafoor@yahoo.com
1
سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان گلستان، گرگان، صندوق پستی: 85799
LEAD_AUTHOR
فلاح زاده، ح.، 1395. مبانی و روش های آمار زیستی. انتشارات آثار سبحان. چاپ پنجم. 222 صفحه.
1
Abdollahpour, G., 1987. Seroepidemiological study of leptospirosis in small animals. D.V.M Thesis No: 1619. Faculty of Veterinary Medicine, University of Tehran.
2
Adler, B. and Pena Mocrezuma, A., 2010.Leptospira and leptospirosis. Vet microbial. Vol. 140, pp: 287-296.
3
Agésilas, F.;Gey, F.;Monbrunt, A.; Combes, J.C.; Llanas, B. and Schlossmacher, P., 2005. Acute leptospirosis in children in Reunion Island: a retrospective review of 16 cases. Arch Pediatr. Vol. 12, No. 9, pp: 1344-1348.
4
Alanso Andicoberry,C.;Garcia Pena,F.J.;Pereira Bueno, J.; Costas, E. and Ortego-Mora, L.M., 2001. Herd-level risk factors associated with leptospira spp. Seroprevalence in dairy and beef catle in Spain. Preventive veterinary medicine. Vol. 52, pp: 109-117.
5
Asadpoor, Y., 2005. Study sertological of leptospirosis in Guilan province cows. The final report of the research project at Razi Vaccine Research Institute. (In Persian)
6
Barkin, R.M.; Gackian, I.C. and Glosser, I.W., 1974. Infection by Leptospira ballum: a laboratory associated case. South. Med. J. Vol. 67, pp: 155-156.
7
Brenner, J.; Kaufmann, A.F.; Sulzerk, R.; Steigerwalt, A.G.; Rogers, F.C. and Weyant, R.S., 1999. Further determination of DNA relatedness between serogroups and serovars in the family Leptospiraceae with a proposal for Leptospira alexanderi sp. nov. and four new Leptospira genomospecies. Int. J. Syst. Bacteriol. Vol. 49, pp: 839-858.
8
Garoussi, T.; Vand Yoosefi, M.; Famil Ghadakchi, J. and Noroozian, H.V., 2003. Epidemiologic survey of leptospirosis in staff and dairy herds of livestock around Mashhad. Journal of Faculty of Veterinary Medicine of Tehran. Vol. 58, No. 1, pp: 89-94. (In Persian)
9
Guitian, F.J.; Garcia- pena, F.J.; olivera. J. and Yus, E., 2001. Serological study of the frequency of leptospira infection among dairy lows in farms with suboptimal reproductive efficiency in galicia, spain, veterinary microbiology. Vol. 80, pp: 275-284.
10
Hassanpoor, A.; Fartashvand, M.; Moghaddam, G.H.; Abdollahpoor, G.H.; Amooghloo, B. and Mosaferi, S., 2007. Determination of seroprevalence of Leptospira infection in dairy cattle around Tabriz. Journal of research and Sazandegi. Vol. 74, pp: 67-77. (In Persian)
11
Haji Hajikolaei,M.R.;Ghorbanpour,M.andAbdollahpour, G., 2005. Serological study of Leptospirosis in cattle in Ahvaz. J Faculty of Vet Med, Univ Tehran. Vol. 60, pp: 7-15.
12
Jori, F.; Galvez, H.; Mendoza, P.; Cespedes, M. and Mayor, P., 2009. Monitoring of leptospirosis seroprevalence in a colony of captive collared peccaries (Tayassu tajacu) from the Peruvian Amazon. Research in Veterinary Science. Vol. 86, pp: 383-387.
13
Lau, C.L.; Smythe, L.D.; Craig, S.B. and Weinstein, P., 2010. Climate change, flooding, urbanisation and leptospirosis: fuelling the fire? Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene. Vol. 104, pp: 631-638.
14
Levett, P.N., 2004. Leptospirosis: A forgotten zoonosis. Clinical & applied immunology reviews. Vol. 4, pp: 435-448.
15
Lilenbaum, W.; Morais, Z.M.; Gonçales, A.P.; Souza, G.O.; Richtzenhain, L. and Vasconcellos, S.A., 2007. First isolation of leptospires from dairy goats in Brazil. Brazilian Journal of Microbiology. Vol. 38, pp: 507-510.
16
Maghami, Gh., 1981. The role of leptospirosis causing abortion in the cattle around Tehran. Publications of veterinary organization. No. 20, pp: 50-60.
17
Momtaz, H. and Moshkelani, S., 2012. Detection and characterization of Leptospira spp. Isolated from aborted bovine clinical samples. ACTA vet. brno J. Vol. 81, pp: 21-25.
18
Radostits, O.M.; Gay, C.C.; Hinchcliff, K.W. and Constable, P.D., 2007. Veterinary Medicine. 10th ed. Elsevier. pp: 1094-1110.
19
Shoaiee, S., 1994. Seroepidemiological study of Leptospira infection in East Azarbaijan province. Dissertation for obtaining a doctoral degree in veterinary medicine. Islamic Azad University of Tabriz. (In Persian)
20
Tabatabaiee, A.H. and Firoozi, R., 2011. Animal Bacterial Diseases. Tehran University Press. pp: 431-445.
21
Vahedi Noori, N., 1997. Identification of dominant leptospira strains in suspected cows in Mazandaran province. The final report of the research project at Razi Vaccine Research Institute.
22
Yousefivand, J.; Moradibidhendi, S. and Ahoorai, P., 1995. New findings about leptospirosis in the Razi Institute. Pajouhesh & Sazandegi. No. 25. pp: 72-75.
23
ORIGINAL_ARTICLE
پویش ژنومی نشانه های انتخاب در اسب نژاد کرد
انتخاب جهشهای مفید در برخی جمعیت ها سبب به جا گذاشتن نشانه هایی در سطح ژنوم می شود. به دلیل ارتباط این مناطق با صفات مهم اقتصادی شناسایی این مناطق از ژنوم از موضوعات مهم در پژوهش های ژنتیک حیوانی است. این پژوهش با هدف شناسایی مناطق ژنومی حامل نشانه های انتخاب در اسب نژاد کرد با استفاده از ریزآرایه نانویی اسب 70K انجام شد. تعداد 28 رأس اسب نژاد کرد از مناطق مختلف کردستان و کرمانشاه انتخاب، بعد از خونگیری و استخراج DNA، تعیین ژنوتیپ شدند. جهت جستجوی نشانههای انتخاب از دو آزمونEHH و iHS در محیط R و با استفاده از بسته نرم افزاری rehh استفاده شد. به منظور بررسی ژن ها و QTLهای احتمالی در مناطق کاندیدای انتخاب، از پایگاه داده های نشانگر تک نکلئوتیدی اسب و پایگاه QTL حیوانات استفاده شد. با استفاده از آماره iHS، 9 منطقه ژنومی روی کروموزومهای 11، 7، 5 و 15 به عنوان مناطق کاندیدای نشانه انتخاب، شناسایی شد. جهت ارزیابی اثر انتخاب در این مناطق از آماره EHH به همراه بررسی دیاگرامهای شاخه بندی هاپلوتیپی و بررسی طول LD استفاده شد. روی کروموزوم های 7 و 11 مناطقی به عنوان مناطق حامل نشانه های انتخاب مثبت شناسایی شده و مناطق ژنومی روی کروموزوم های 5 و15 علی رغم فراوانی بالای آللی اثری از انتخاب مثبت اخیر در این نواحی ژنومی مشاهده نشد و آلل ها به عنوان آلل های رایج و قدیمی مشاهده شد. در این مناطق تعدادی ژن و QTL شناسایی شد که در زمینه فعالیت عضلانی، سیستم ایمنی و فعالیت های درون سلولی فعالیت دارند. بنابراین، این مناطق از ژنوم اسب کرد احتمالاً هدف انتخاب مثبت بوده است.
http://www.aejournal.ir/article_85692_da478db3eb039f4d801d3910da151d9a.pdf
2018-12-22
119
128
پویش ژنومی
نشانه های انتخاب
اسب کرد
علیرضا
خان احمدی
ali.khanahamadi@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران، صندوق پستی: 163
LEAD_AUTHOR
قدرت الله
رحیمی میانجی
rahimimianji@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران، صندوق پستی: 5780
AUTHOR
محمدحسین
مرادی شهر بابک
moradi.hosein@gmail.com
3
گروه علوم دامی، پردیس دانشگاه تهران، کرج، ایران، صندوق پستی: 4111
AUTHOR
سید حسن
حافظیان
hassanhafezian@yahoo.com
4
گروه علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران، صندوق پستی: 5780
AUTHOR
محمدباقر
زندی باغچه مریم
za.avat@gmail.com
5
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زنجان، زنجان، ایران، صندوق پستی: 313
AUTHOR
انصاری پیرسرایی، ز.؛ جعفری صیادی، ع. و نویدشاد، ب.، 1382. مباحثی از بیوشیمی در علوم دامی. انتشارات حق شناس. 150 صفحه.
1
مخبر، م.؛ مرادی شهربابک، م.؛ صادقی، م.؛ مرادی شهربابک، ح. و ویلیامز، ج.، 1394. پویش ژنومی نشانه های انتخاب در گاومیش های خوزستانی و مازندرانی. علوم دامی ایران. دوره 64، شماره2، صفحات 119 تا 131.
2
مرادی، م.ح.؛نجاتی جوارمی، ا.؛ مرادی شهربابک، م.؛ دادز، ک. و مکایوان، ج.، 1389. کاوش ژنومیک تمایز جمعیتی در نژادهای زل و لری بختیاری. مجله بیوتکنولوژی کشاورزی. دوره 2، شماره2، صفحات 58 تا 70.
3
قلی زاده، م.؛ رحیمی میانجی، ق. و نجاتی جوارمی، ا.، 1393. بررسی عدم تعادل لینکاژی و مطالعه ارتباط ژنومی هاپلوتیپی جهت شناسایی مناطق ژنومی مؤثر بر دوقلوزایی در گوسفندان نژاد بلوچی. پژوهش های تولیدات دامی. سال 5، شماره 10، صفحات 166 تا 178.
4
Akey, J.M., 2009. Constructing genomic maps of positive selection in humans. Where do we go from here? Genome Research. Vol. 19, pp: 711-722.
5
Bahbahani, H.; Clifford, H.; Wragg, D.; Mbole-Kariuki, M.N.; Tassell, C.V.; Sonstegard, T.; woolhouse, M. and Hanotte, O., 2015. Signatures of positive selection in East African Shorthorn Zebu: A genome-wide single nucleotide polymorphism analysis. Scientific Reports. Vol. 5, pp: 1-13.
6
Barrett, R.D.H. and Schluter, D., 2007. Adaptation from standing genetic variation. Trends in Ecology and Evolution. Vol. 23, pp: 38-44.
7
Biswas, S. and Akey, J.M., 2006. Genomic insights into positive selection. Trends in Genetics. Vol. 22, pp: 437-436.
8
Charlesworth, B., 2007. A hitch-hiking guide to the genome: A commentary on 'The hitch-hiking effect of a favourable gene' by John Maynard Smith and John Haigh. Genetic Research. Vol. 89, pp: 389-390.
9
Diamond, J., 2002. Evolution, consequences and future of plant and animal domestication. Nature. Vol. 418,
10
pp:700-707.
11
Emmeline, W.H.; Beatrice, A.M.; Jingjing, G.U.; Ronan, W. and David, E.M., 2010. A genome-wide SNP-association study onfirms a sequence variant (g.66493737C>T) in the equine myostatin (MSTN) gene as the most powerful predictor of optimum racing distance for Thoroughbred racehorses. BMC genetics. Vol. 11, pp: 1-10.
12
Flory, L.; Fritz, S.; Jaffrézic, F.; Boussaha, M.; Gut, I.; Heath, S.; Foulley, J.L. and Gautier, M., 2009. The genome response to artificial selection: A case study in dairy cattle. PLOS One. Vol. 4, pp: 6595.
13
Gautier, M. and Renaud, V., 2012. Rehh: An R package to detect footprints of selection in genome-wide SNP data from haplotype structure. Bioinformatics. Vol. 28, pp: 1176-1177.
14
Harris, E.E. and Meyer, D., 2006. The molecular signature of selection underlying human adaptations. American Journal of Physical Anthropology. Vol. 131, pp: 89-130.
15
Hayes, B.; Lien, S.; Nilsen, H.; Olsen, H.G.; Berg, P.; MacEachern, S.; Potter, S. and Meuwissen, T.H.E., 2008. The origin of selection signatures on bovine chromosome six. Animal Genetics. Vol. 39, pp: 105-111.
16
Jessica Petersen, J.L.; Mickelson, J.R.; Cothran, E.G.; L.S. and Andersson, J.A., 2013. Genetic diversity in the modern horse illustrated from genome-wide SNP data. PLOS ONE. Vol. 8, No. 1, pp: 54997.
17
Kaplan, N.L.; Hudson, R.R. and Langley, C.H., 1989. The Hitchhiking Effect revisited. Genetics. Vol. 123, pp: 887-899.
18
Kim, Y. and Stephan, W., 2002. Detecting a local signature of genetic hitchhiking along a recombining chromosome. Genetics. Vol. 160, pp: 765-777.
19
Kimura, M., 1989. The neutral theory of molecular evolution and the world view of neutralists. Genome. Vol. 31, pp: 24-31.
20
Maynard-Smith, J. and Haigh, J., 1974. The hitch-hiking effect of a favorable gene. Genetic Research. Vol. 23,
21
pp: 23-35.
22
Miller, S.A.; Dykes, D.D. and Pole sky, H.F., 1988. A simple salting out procedure for extracting DNA from human nucleated cells. Nucleic Acids Research. Vol. 16, 1215 p.
23
Nielsen, R., 2001. Statistical tests of selective neutrality in the age of genomics. Heredity. Vol. 86, pp: 641-647.
24
Nielsen, R., 2005. Molecular signatures of natural selection. Annual Review of Genetics. Vol. 39, pp:197-218.
25
Purcell, S.; Neale, B.; Todd-Brown, K.; Thomas, L.; Ferreira, M.A.; Bender, D.; Maller, J.; Sklar, P.; Bakker, P.I. and Daly, M.J., 2007. PLINK: a tool set for whole genome association and population-based linkage analyses. The American Journal of Human Genetics. Vol. 81, pp: 559-575.
26
Qanbari, S.; Gianola, D.; Hayes, B.; Schenkel, F.; Miller, S.; Moore, S.; Thaller, G. and Simianer, H., 2011. Application of site and haplotype-frequency based approaches for detecting selection signatures in cattle. BMC Genomics. Vol. 16, pp: 12-318.
27
Qanbari, S.; Pausch, H.; Janse, S.; Somel, M.; Strom, T.M.; Fries, R.; Nielsen, R. and Simianer, H., 2014. Classic selective sweeps revealed by massive sequencing in cattle. PLOS Genet. Vol. 10, pp:1004148.
28
Sabeti, P.; Reich, D.E.; Higgins, J.M.; Levine, H.Z.; Richter, D.J.; Schaffner, S.F.; Gabriel, S.B.; Platko, J.V.; Patterson, N.J.; McDonald, G.J.; Ackerman, H.J.; Campbell, S.J.; Altshuler, D.; Cooper, R.; Kwiatkowski, D.; Ward, R. and Lander, E.S., 2002. Detecting recent positive selection in the human genome from haplotype structure. Nature. Vol. 419, pp:832-837.
29
Sabeti, P.; Schaffner, S.F.; Fry, B.; Lohmueller, J.; Varilly, P.; Shamovsky, O.; Palma, A.; Mikkelsen, T.S.; Altshuler, D. and Lande, E.S., 2006. Positive natural selection in the human lineage. Science. Vol. 3129,
30
pp: 1614-1620.
31
Scheet, P. and Stephens, M., 2006. A fast and flexible statistical model for large-scale population genotype data: applications to inferring missing genotypes and haplotypic phase. The American Journal of Human Genetics. Vol. 78, pp: 629-644.
32
Schurink, A.; Ducro, B.J.; Bastiaansen, J.W.M.; Frankena, K. and van Arendonk, J.A.M., 2012. Genome wide association study of insect bite hypersensitivity in Dutch Shetland pony marses. Animal genetics. Vol. 44,
33
pp: 44-52.
34
Teo, Y.Y.; Fry, A.E.; Clark, T.G.; Tai, E.S. and Seielstad, M., 2007. On the Usage of HWE for identifying genotyping errors. Annals of Human Genetics. Vol. 71, pp: 701-703.
35
Voight, B.F.; Kudaravalli, S.; Wen, X. and Pritchard. J.K., 2006. A map of recent positive selection in the human genome. PLOS Biology. Vol. 4, pp: 72.
36
Yun Young, G.O.; Ernest, B.; Deborah, G.; Cook, J.; Stephen, J.; Coleman, J.; James, N.; MacLeod, N.; Kuey-Chu, C.; Peter, J.; Timoney, J. and Udeni Balasuriya, B.R., 2011. Genome-wide association study among four horse breeds identifies a common haplotype associated with in vitro CD3+ T cell susceptibility/resistance to equine arteritis virus infection. Journal of Virology. Vol. 24, pp:13174-13184.
37
Zola, H.; Swart, B.; Banham, A.; Barry, S.; Beare, A.; Bensussan, A.; Boumsell, L.; Buckley, D.; Bühring, H.J.; Clark, G.; Engel, P.; Fox, D.; Jin, B.Q.; Macardle, P.J.; Malavasi, F.; Mason, D.; Stockinger, H. and Yang, X., 2007. CD molecules -human cell differentiation molecules. Journal Immunology Methods. Vol. 319,
38
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تغییرات کمی و کیفی زیستگاه سنجاب ایرانی در جنگلهای استان لرستان تا سال 2050 بر اساس مدل اقلیمی CCSM4
طبق برآوردهای IUCN حدود 30 درصد انقراضهای موجودات تا سال 1980 به دلیل نابودی زیستگاه بوده است. تغییرات اقلیمی یکی از مهم ترین عوامل نابودی زیستگاه در سالهای اخیر بودهاند. جنگلها از حساسترین اکوسیستمها به تغییرات اقلیمی هستند، در نتیجه گونههای جنگلی مانند سنجابها در معرض آسیبهایی زیادی از طرف تغییرات اقلیمی قرار دارند. پیشبینی نحوه اثرگذاری تغییرات اقلیمی بر زیستگاه گونهها میتواند به برنامه ریزی حفاظت از گونهها کمک شایانی کند. مدلسازی زیستگاه یکی از پرکاربردترین روشها برای بررسی اثرات تغییرات اقلیمی بر گونهها و زیستگاههای آنها در آینده دور و نزدیک است و مدل حداکثر آنتروپی یکی از کارآمدترین مدلها در این زمینه به حساب میآید. به همین منظور در این مطالعه از مدل حداکثر آنتروپی به همراه 13 عامل محیطی برای شناسایی زیستگاههای مطلوب سنجاب ایرانی در جنگلهای استان لرستان در زمان حال و چگونگی تاثیرگذاری تغییرات اقلیمی بر این زیستگاهها تا سال 2050 بر اساس مدل اقلیمی CCSM4 استفاده شد. شاخص سطح زیر نمودار برابر با 0/92 نشان دهنده کارایی خوب این مدل در این مطالعه بود. نتایج نشان داد که در زمان حال حدود 57 درصد جنگلهای استان لرستان دارای مطلوبیت زیستگاهی برای گونه سنجاب ایرانی هستند که از این میزان 17/78 درصد مطلوبیت زیاد، 25/59 درصد مطلوبیت متوسط و 13/63 درصد مطلوبیت کم را دارا هستند. هم چنین نتایج نشان داد که براساس مدل اقلیمی CCSM4 مناطق جنگلی دارای مطلوبیت زیستگاهی برای سنجاب ایرانی، از 57 درصد کل مساحت جنگلهای استان لرستان در زمان حال به 22/58 درصد در سال 2050 کاهش خواهد یافت که از این میزان 5/36 درصد مطلوبیت زیاد، 8/2 درصد مطلوبیت متوسط و 8/99 درصد مطلوبیت کم را دارا خواهند بود.
http://www.aejournal.ir/article_85724_d576219607b674f3d27e6896def94882.pdf
2018-12-22
129
136
نابودی زیستگاه
مدلسازی مطلوبیت زیستگاه
سنجاب ایرانی
تغییر اقلیم
امید
قدیریان
omidghadirian90@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
محمود رضا
همامی
mrhemami@cc.iut.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
LEAD_AUTHOR
علیرضا
سفیانیان
soffianian@cc.iut.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
اسدیان، م. و علی آبادیان، م.، 1392. ارزیابی پراکنش گونه بالابان با استفاده از مدل مکسنت. اولین کنفرانس بین المللی اکولوژی سیمای سرزمین، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان.
1
اشرف زاده، م. و دانه کار، ا.، 1390. ارزیابی و مدلسازی مطلوبیت زیستگاه راهکاری برای مدیریت پایدار حیات وحش. اولین کنفرانس ملی راهکارهای دستیابی به توسعه پایدار در بخشهای کشاورزی، منابع طبیعی و محیط زیست. تهران.
2
باقری، م.، 1389. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه و برآورد تراکم جمعیت گور ایرانی در منطقه حفاظت شده توران. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان.
3
بیرانوند، ا.؛ عطارد، پ.؛ توکلی، م. و مروی مهاجر، م.ر.، 1394. زوال بوم سازگان جنگلی زاگرس، علل، پیامدها و راهکارها. فصلنامه جنگل و مرتع. شماره 106، صفحات 17 تا 29.
4
توکلی، م.؛ محمدی نژاد، م.ر. و پیروزی، ف.، 1391. بررسی پدیده زوال و خشکیدگی درختان بلوط Oak decline در عرصههای جنگلی استان لرستان. نخستین همایش ملی حقوق محیط زیست و منابع طبیعی زاگرس. خرمآباد.
5
خلیلی، ف. و ملکیان، م.، 1393. بررسی وضعیت گونه سنجاب ایرانی (Sciurus anumalus) در ایران، دومین همایش ملی و تخصصی پژوهشهای محیط زیست ایران. دانشکده شهید مفتح همدان.
6
خلیلی، ف.؛ ملکیان، م.؛ روجائی، ن. و همامی، م.ر.، 1395. ارزیابی زیستگاه سنجاب ایرانی (Sciurus anumalus) در منطقه جنگلی سروک در استان کهگیلویه و بویراحمد. بوم شناسی کاربردی. شماره 4، صفحات 15 تا 24.
7
شمسی پور، ع.، 1392. مدلسازی آب و هوایی، نظریه و روش. انتشارات دانشگاه تهران. 294 صفحه.
8
صادقی، م.، 1392. آشکارسازی تغییرات زیستگاه سنجاب ایرانی در استان کردستان. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان.
9
ضیائی، ه.، 1390. راهنمای صحرایی پستانداران ایران، انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. 420 صفحه.
10
علیزاده، ا.، 1388. اصول هیدرولوژی کاربردی، انتشارات دانشگاه امام رضا. 942 صفحه.
11
عطارد، پ. و صادقی، م.، 1392. بررسی پارامترهای اقلیمی زاگرس. نخستین همایش ملی مخاطرات محیط زیست زاگرس. خرم آباد.
12
عطارد، پ.؛صادقی، س.م.م.؛طاهری سرتشنیزی،ف.؛ ساروئی، س.؛عباسیان، پ.؛ مسیح پور، م.؛ کردستمی، ف. و دریکوندی، ا.، 1394. اثرگذاری عوامل اقلیمی و تبخیر و تعرق بر زوال جنگلهای زاگرس مرکزی در استان لرستان. فصلنامه تحقیقات حمایت و حفاظت جنگلها و مراتع ایران. سال 13، شماره 2، صفحات 98 تا 114.
13
کفاش، ا.؛ یوسفی، م.؛ احمدی، م.؛ کلهر، گ. و کابلی، م.، 1392. پیش بینی اثر تغییرات اقلیمی بر خزندگان مناطق بیابانی ایران (مطالعه موردی سوسمار دم تیغی بین النهرین). سومین کنفرانس برنامه ریزی و مدیریت محیط زیست، دانشگاه تهران. تهران.
14
گودرزی، م.،1390. بررسی و ارزیابی تاثیرات وقوع پدیده دگرگونی اقلیمی روی رواناب سطحی کرخه علیا. رساله دکتری جغرافیای طبیعی گرایش کلیماتولوژی، دانشکده علوم انسانی و اجتماعی، دانشگاه تبریز.
15
مرادی، س.؛ محمودی، ص. و شیخی ئیلانلو، ص.، 1395. زیستگاههای جنگلی مناسب برای حفاظت از سنجاب ایرانی (Sciurus anomalus pallescens) در غرب استان کرمانشاه. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 8، شماره 2، صفحات 33 تا 40.
16
مصطفوی، م.، 1389. تهیه نقشه مطلوبیت زیستگاههای بهاره و تابستانه گونه پازن aegagrus Capra در پارک ملی لار. فصلنامه علوم و فنون منابع طبیعی. سال 5، شماره 2، صفحات 112 تا 122.
17
مومنی، م.، 1388. انتخاب زیستگاه و برآورد فرآوانی گورخر ایرانی در پارک ملی قطرویه. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان.
18
Albayrak, U. and Atilla, A., 2006. Contribution to the taxonomical and biological characteristics Sciurus anomalus in Turkey. Turkish Journal Zoology. Vol. 300, pp: 111-116.
19
Allen, C.D.; Macalady, A.K.; Chenchouni, H.; Bachelet, D.; McDowell, N.; Vennetier, M.; Kitzberger, T.; Rigling, A.; Breshears, D.D.; Hogg, E.H.; Gonzalez, P.; Fensham, R.; Zhang, Z.; Castro, J.; Demidova, N.; Lim, J.H.; Allard, G.; Running, S.W.; Semerci, A. and Cobb, N., 2010. A global overview of drought and heat-induced tree mortality reveals emerging climate change risks for forests. Forest Ecology and Management. Vol. 259, pp: 660-684.
20
Amr, Z.S.; Eid, E.; QarQaz, M.A. and Abu BaKer, M., 2006. The status and distribution of the Persian squirrel, Sciurus anomalus, in Dibbeen Nature Reserve, Jordan. Zoologische Abhandlungen (Dresden). Vol. 55, pp: 199-207.
21
Brown, J.L. and Yoder, A.D., 2015. Shifting ranges and conservation challenges for lemurs in the face of climate change. Ecology and Evolution. Vol. 5, pp: 1131-1142.
22
Dibike, Y.B. and Coulibaly, P., 2005. Hydrologic impact of Climate Change in The Saguenay Watershed: Comparison of Downscaling Methods and Hydrologic Models. Journal of Hydrology. Vol. 307, pp: 145-163.
23
Harrison, P.A.; Berry, P.M.; Butt, N. and New, M., 2006. Modelling climate change impacts on species’ distributions at the European scale: implications for conservation policy. Environmental Science and Policy. Vol. 9, pp: 116-128.
24
Hijmans, R.J.; Cameron, S.E.; Parra, J.L.; Jones, P.J. and Jarvis, A., 2005. Very high resolution interpolated climate surfaces for global land areas. International Journal of Climatology. Vol. 25, pp: 1965-1978.
25
Hijmans, R.J.; Philips, S.; Leathwick, J. and Elith, J., 2016. dismo: Species Distribution Modeling. R package version. Vol. 1, pp: 1-4.
26
IPCC. 2007. The Fourth Assessment Report of the Intergovernmental Panel on Climate Change. Cambridge University Press. UK. 976 p.
27
Khalili, F.; Malekian, M. and Hemami, M.R., 2016. Characteristics of den, den tree and sites selected by the Persian squirrel in Zagros forests, western Iran. Mammalia. Vol. 80, pp: 560-570.
28
Koprowski, L.J.; Gavish, L. and Doumas, S.L., 2016. Sciurus anomalus. Mammalian species. Vol. 48, pp: 48-58.
29
Mounir, R.A.; Jeannette, E.K.; Hassane, M. and Zuhari, S.A., 2014. Ecology of the Persian Squirrel, Sciurus anomalus, in HorshEhden Nature Reserve, Lebanon. Vertebrate Zoologt. Vol. 64, pp: 127-135.
30
Philips, J.S.; Dudik, M. and Schapire, E., 2004. A maximum entropy approach to species distribution modeling. Proceedings of the Twenty-First International Conference of Machin Learning, Banff. Alberta, Canada.
31
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographical distributions. Ecological Modeling. Vol. 190, pp: 231-259.
32
Segan, D.B.; Murray, K.A. and Watson, J.E., 2016. A global assessment of current and future biodiversity vulnerability to habitat loss-climate change interactions. Global Ecology and Conservation. Vol. 5, pp: 12-21.
33
Semenov, M.A.; Brooks, R.J.; Barrow, E.M. and Richardson, C.W., 1998. Comparison of the WGEN and LARS-WG stochastic weather generators in diverse climates. Climate Research. Vol. 10, pp: 95-107.
34
Smit, B.; Burton, I.; Klien R.J. and Wandel, J., 2000. An anatomy of adaptation to climate change and variability. Climatic change. Vol. 45, pp: 223-257.
35
Thorn, J.S.; Nijman, V.; Smith, D. and Nekaris, K.A.I., 2009. Ecological niche modelling as a technique for assessing threats and setting conservation priorities for Asian slow lorises (Primates: Nycticebus). Diversity and Distributions. Vol. 15, pp: 289-298.
36
Walther, G.R.; Post, E.; Convey, P.; Menzel, A.; Parmesan, C.; Beebee, T.J.C.; Fromentin, J.M.; Hoeghguldberg, O. and Bairlein, F., 2002. Ecological responses to recent climate change. Nature. Vol. 416, pp: 389-395.
37
ORIGINAL_ARTICLE
مدل سازی مطلوبیت زیستگاه سنجاب ایرانی (Sciurus anomalus) به روش تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی در منطقه حفاظت شده دنا
تهدیدات و تعارضهای انسانی موجود در منطقه حفاظتشده دنا، وجود روستاهای بسیار، تخریب جنگلهای بلوط وگسترش زمینهای کشاورزی زیستگاه گونه سنجاب ایرانی را در این منطقه محدود کرده است. مدلهای ارزیابی زیستگاه، محدوده توزیع گونهها و زیستگاههایشان را پیشبینی میکنند، بنابراین میتوانند بهعنوان ابزار مناسبی برای اهداف حفاظتی و مدیریتی بهکار روند. با هدف مدلسازی زیستگاه سنجاب ایرانی در دو فصل بهار و تابستان از روش تجزیه وتحلیل عاملیآشیان بومشناختی (ENFA) در محیط نرمافزار Biomapper استفادهشده است. در این مطالعه از نقاط حضور گونه بهعنوان متغیر وابسته و از 8 متغیر محیطی بهعنوان متغیر مستقل استفاده شد. این لایهها تهیه و وارد تجزیه و تحلیل شدند. نقشه مطلوبیت زیستگاه تهیه شده برای گونه سنجاب ایرانی، بیانگر این است که زیستگاه مطلوب در غرب و جنوبغرب کوه دنا و در مناطقی که دارای پوشش جنگلی بلوط با تراکم نسبت کم با شیب کمتر از 14% در فصل بهار و 11% در فصل تابستان است. براساس مقادیر تخصصگرایی، مهمترین عامل مؤثر در آشیان بومشناختی گونه مورد مطالعه در فصل بهار و تابستان بهترتیب پاسگاه محیطبانی، درصد شیب، شاخص پوشش گیاهی و فاصله از جاده است. بذر بلوط، نقش اساسی در وسعت گستره خانگی سنجاب ایرانی دارد بهطوریکه در فصل بهار بهدلیل کمبود مواد غذایی بهخصوص بذر بلوط نسبت به فصل تابستان بیشتر است.
http://www.aejournal.ir/article_85734_dfd483091decd1037d9779a03094f6c6.pdf
2018-12-22
137
146
سنجاب ایرانی
مدلسازی مطلوبیت زیستگاه
منطقه حفاظتشده دنا
تحلیل عاملی آشیان بومشناختی
حسین
اقطاری
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه پیام نور تهران شرق، تهران، ایران
AUTHOR
فرنگیس
سخنگو
f.sokhango95@gmail.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
LEAD_AUTHOR
امیدی، م.؛ کابلی، م.؛ کرمی، م.؛ سلمانماهینی، ع. و حسن زادهکیابی،ب.، 1388.مدلسازی زیستگاه پلنگ ایرانی Pantherapardu saxicolor بهروش تحلیل عاملی آشیان بومشناختی در پارک ملی کلاه قاضی، استان اصفهان. مجله علوم و تکنولوژی محیطزیست. دوره 12، شماره 1، صفحات 137 تا 148.
1
بهداروند، ن.؛کابلی،م.؛جباریانامیری،ب.؛ابراهیمپور،ر.؛اسدیآقبلاغی،م. وایمانیهرسینی،ج.، 1393.شناسایی مناطق پرخطر و عوامل محیطی مؤثر بر حملات گرگ به دام در استان همدان با بهکارگیری روش مدلسازی MAXENT. مجله محیط زیست طبیعی. دوره 67، شماره 3، صفحات 245 تا 252.
2
تکتهرانی،ع.؛شمساسفندآباد،ب.؛کرمی،م. وفرهادنیا،م.ص.، 1394. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه شاه روبا (Vulpes cana) مبتنی بر فناوری دوربینهای تلهای در ایران. محیطزیست جانوری. دوره 7، شماره 3، صفحات39 تا 46.
3
چمنی، ن. و کبودوندپور، ش.، 1392. ارزیابی مطلوبیت زیستگاه سنجاب ایرانی Sciurus anomalus در جنگلهای بلوط کردستان. سومین کنفرانس برنامهریزی و مدیریت محیطزیست. دانشگاه تهران.
4
خلیلی، ف. و ملکیان، م.، 1393. بررسی وضعیت گونه سنجاب ایرانی در ایران. دومین همایش ملی و تخصصی پژوهشهای محیط زیست ایران، دانشکده شهید مفتح همدان.
5
خلیلی،ف.،1393. بررسی انتخاب زیستگاه و مدلسازی مطلوبیت زیستگاه سنجاب ایرانی در مناطق حفاظت شده استان کهگیلویه و بویراحمد. پایاننامه کارشناسیارشد. دانشگاه صنعتی اصفهان. 86 صفحه.
6
شمساسفندآباد، ب.، 1390. مدلسازی مطلوبت زیستگاه گوسفند وحشی و بز وحشی در مناطق کوهستانی فلات مرکزی ایران، مطالعه موردی منطقه حفاظتشده هفتاد قله. رساله دکتری، دانشگاه آزاد اسلامی- واحد علوم و تحقیقات تهران. 142 صفحه.
7
شیرزاد، م.، 1390. تهیه نقشه مطلوبیت زیستگاههای پازن در پارک ملی خجیر. پایاننامه کارشناسیارشد، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات تهران.
8
صادقی، م.، 1392. آشکارسازی تغییرات زیستگاه سنجاب ایرانی Sciurus anomalus در استان کردستان. پایاننامه کارشناسیارشد، دانشگاه صنعتی اصفهان. 61 صفحه.
9
ضیایی، ه.، 1387. راهنمای صحرایی پستانداران ایران.کانون آشنایی با حیاتوحش. تهران. 154 صفحه.
10
ضیایی، ه.، 1388. راهنمای پستانداران ایران.انتشارات فرزانه. تهران. 186 صفحه.
11
عطایی، ف.؛ کابلی، م. و کرمی، م.، 1391. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه تابستانه خرس قهوهای در منطقه حفاظتشده البرز جنوبی. مجله منابع طبیعی ایران. دوره 65، شماره 2، صفحات 13 تا 22.
12
عباسی،س.؛حسینی،س.؛پیلهور،ب. وزارع،ح.، 1388. اثر حفاظت بر تنوع زیستی گونههای چوبی در منطقه اشترانکوه لرستان. مجله جنگل ایران. شماره 1، صفحات 1 تا 10.
13
فیروز. ا.، 1390. حیات وحش ایران. مرکز نشر دانشگاهی. تهران. 394 صفحه.
14
فراشی، آ. و کابلی، م.، 1389. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه بز و پازن بهکمک روش تحلیل فاکتوری آشیان بومشناختی در پارک ملی کلاه قاضی استان اصفهان. مجله منابع طبیعی ایران. دوره 4، صفحات 63 تا 73.
15
فلاحباقری، ف.؛ کابلی، م. و فراشی، آ.، 1388. ارزیابی زیستگاه قوچ و میش اصفهانی Ovis orientalis isfahanica پارک ملی کلاه قاضی با روش .ENFA همایش و نمایشگاه ژئوماتیک. سازمان نقشه برداری کشور. تهران. صفحه 9.
16
قندالی، م.، 1389. مقایسه ارزیابی زیستگاه با استفاده از روشهای مدل خطی تعمیمیافته و تجزیه و تحلیل فاکتورهای آشیان بومشناختی برای گوسفند وحشی در پارک ملی کویر. پایاننامه کارشناسیارشد. دانشگاه تهران.
17
کفاش،ا.؛کابلی،م. و گونتا،ک.، 1394. بررسی مقایسه اثر تغییر اقلیم بر خزندگان مناطق بیابانی و کوهستانی ایران، مطالعه موردی (سوسمار دمتیغی بینالنهرین Saara loricata و آگامای قفقازی Paralaudakia caucasia). مجله محیط زیست جانوری. دوره 7، شماره 3، صفحات 103 تا 108.
18
موسوی،س.ش.، 1390.بررسی تنوع ژنتیکی در جمعیتهای سنجاب ایرانی (Sciurus anomalus) زاگرس شمالی با استفاده از نشانگر.ISSR پایاننامه کارشناسیارشد، دانشگاه کردستان. 62 صفحه.
19
Hirzel, A.H.; Hausser, J.; Chessel, D. and Perrin, N., 2002. Ecological niche factor Analysis: how to compute habitat – sutiablility maps without absencedata? Ecology. Vol. 83, No. 7, pp: 2027-2036.
20
Hirzel, A.H. and Arlettaz, R., 2003. Modeling habitat sutitability for complex species distributions by environmental distance geometric mean. Environmental management. Vol. 32, No. 5, pp: 614-632.
21
Hirzel, A., 2004. Biomapper 3 user, s manual.
22
Master, F.M.; Ferreira, J.P. and Mira, A., 2007. Modeling the distribution of the European Polecat Mustela putorius in a Mediterranean agricultural landscape. Revue d'Ecologie (Terre Vie). Vol. 62, pp: 35-47.
23
Mounir, R.A.; Jeannette, E.K.; Hassane, M. and Zuhari, S.A., 2014. Ecology of the Persian Squirrel, Sciurus anomalus, in HorshEhden Nature Reserve, Lebanon. Vertebrate Zoologt. Vol. 64, pp: 127-135.
24
Bruggeman, J.B., 2010. Pilot study on factors affecting pika population in the north cascades ecosystem. Final report. Beartooth Wildlife Research, California Press, Berkeley, California, USA. 197 p.
25
Haleem, A.; Ilyas, O.; Syed, Z. and Arya, S.K., 2012. Abundance and distribution of Royle’s Pika (Ochotona roylei) along different altitudinal ranges of Kedarnath Wildlife Sanctuary, Uttarakhand Himalayas, India. IOSR Journal of Environmental Science, Toxicology and Food Technology (IOSR-JESTFT). Vol. 1, No. 2, pp: 13-16.
26
Richardson, R.M., 2012. Factors Influencing Pika Foraging Behavior in North Cascades National Park Service Complex, Washington. Division of Biological Sciences, University of Montana, Missoula, MT, 59812, USA. 139 p.
27
Velásquez-Tibatá, J.; Salaman, P. and Graham, C.H., 2012. Effects of climate change on species distribution,community structure, and conservation of birds inprotected areas in Colombia. Reg Environ Change. DO10.1007/s10113-012-0329-y.
28
Yigit, N.; Kryštufek, B.; Sozen, M.; Bukhnikashvili, A. and Shenbrot, G., 2008. Sciurus anomalus. TheIUCN Red List of Threateneds. http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.
29
ORIGINAL_ARTICLE
توسعه شبکه مناطق حفاظتی با به کارگیری رویکرد برنامهریزی سیستماتیک در ایران
با توجه به اهمیت حفاظت از تنوع زیستی کشور، انتخاب مناطق حفاظتی صحیح کهمعرف خوبی از تنوع زیستگاهها و گونههای حیاتوحش کشور باشند، امری ضروری است. لذا این مطالعه با هدف بررسی میزان کارایی شبکه فعلی مناطق تحت حفاظت سازمان حفاظت محیط زیست در حفاظت از تنوع زیستی کشور و معرفی مناطق جدید جهت افزایش کارآیی این شبکه با استفاده از رویکرد برنامهریزی سیستماتیک بهانجام رسیده است. بدین منظور ۱۲۶ جانشین تنوع زیستی متشکل از ۲۰ گونه پستاندار،۲۰ گونه پرنده، ۵۳ گونه خزنده، ۱۰ گونه دوزیست، ۱۹ اکورژیون و ۴ منطقه با غنای بالای گونههای تکلپه ای اندمیک مورد استفاده قرار گرفته و میزان حفاظت از آنها بررسی شد. نتایج نشان میدهد که برای ۴۳ گونه از مهرهداران، ۱۱ اکورژیون و نیمی از مناطق با غنای گونهای بالای گیاهان تکلپه ای اندمیک کمتر از ۱۰ درصد از مناطق واجد حفاظت، در درون شبکه مناطق حفاظتی موجود جای دارند. همچنین استفاده از نرمافزار برنامهریزی سیستماتیک حفاظت Marxan بهمنظور معرفی مناطق تکمیلی جدید به شبکه فعلی مناطق تحت حفاظت کشور نشان میدهد که باید حدود ۲۰ الی ۳۰ درصد از سطح کشور تحت حفاظت قرار گیرد. به علاوه، حدود ۱۵ درصد از سطح کشور در حفاظت از تنوع زیستی آن غیرقابل جایگزین هستند. لذا نتایج این مطالعه با معرفی مناطق تکمیلی برای شبکه مناطق حفاظتی کشور با رعایت موارد مهمی ازجمله حداقل وسعت (کمترین هزینه ممکن)، حداقل تعارض با جوامع انسانی و بیشترین کارآیی در حفاظت از تنوع زیستی میتواند مورد استفاده سازمان حفاظت محیط زیست ایران قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_85820_c8fbc297ef82e5b5eed427ab901509e5.pdf
2018-12-22
147
162
برنامهریزی سیستماتیک حفاظت
جانشین تنوع زیستی
Marxan
شبکه مناطق حفاظت شده ایران
بهمن
شمس اسفند آباد
bshams1357@gmail.com
1
گروه محیط زیست، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
محمد
کابلی
mkaboli@ut.ac.ir
2
گروه محیط زیست، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
اسفنده، س.؛ کابلی، م. و اسلامی، ل.، 1396. استفاده از الگوریتم بهینه سازی مذاب سازی شبیه سازی شده برای اولویت بندی سیستماتیک مناطق حفاظت شده در استان البرز ایران. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 9، شماره ۱، صفحات 105 تا 122.
1
جعفری، ع.؛ یاوری، ا.؛ بهرامی، ش. و یارعلی، ن.، ۱۳۸۹. انتخاب مناطق حفاظت شده جدید با تاکید بر تیپ های گیاهی و استفاده از C-Plan (مطالعه موردی: استان کهگیلویه و بویراحمد). مجله علوم محیطی. دوره ۳۶، شماره ۵۶، صفحات ۱ تا ۱۲.
2
سلمان ماهینی،ع.؛ اسدالهی، ز.؛ صبایی، م.؛ کامیاب، ح. و نصیراحمدی،ک.، ۱۳۹۳. مقایسه روش های شبیه سازی تبرید تدریجی و اختصاص چند هدفه زمین در گزینش بهینه کاربری های اراضی. بوم شناسی کاربردری. سال 3، شماره 9، صفحات ۱ تا ۱۲.
3
کابلی، م.؛ علی آبادیان، م.؛ توحیدی فر، م.؛ هاشمی، ع. و روزلار، ک.، 1391. اطلس پرندگان ایران. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست.
4
کرمی، م.؛ قدیریان، ط. و فیض الهی، ک.، 1391. اطلس پستانداران ایران. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست.
5
مجنونیان، ه.، 1393. مناطق حفاظت شده، مبانی و تدابیر حفاظت از پارک ها و مناطق در ایران و جهان. انتشارات نشر دی. ۴۱۴ صفحه.
6
محرابیان، ا.، 1395. نقشه گیاهان تک لپه ای اندمیک ایران. دانشگاه شهید بهشتی. تهران. ایران.
7
مظفری، ا.؛ کمالی، ک. و فهیمی، ه.، 1392. اطلس خزندگان ایران. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست.
8
مهری، آ.؛ سلمان ماهینی، ع.؛ میرکریمی، ح. و رضایی، ح.، ۱۳۹۳. مقایسه کارایی سه الگوریتم هوشمند رایانه ای در انتخاب مناطق مناسب حفاظت (مطالعه موردی: استان مازندران). مجله محیط شناسی. دوره ۴۰، شماره ۱، صفحات ۱ تا ۱۶.
9
ضیایی، ه.، 1387. راهنمای صحرایی پستانداران ایران. انتشارات مرکز حیاتوحش.
10
یوسفی سیاه کلرودی، س.؛ سعیدی، ه.؛ بهفر، م.؛ فلاحی، ر. و ایزدیان. م.، 1392. اطلس دوزیستان ایران. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست.
11
Ardron, J.A.; Possingham, H.P. and Klein, C.J., 2008. Marxan good practices handbook. Pacific Marine Analysis and Research Association, Vancouver.
12
Ball, I.R. and Possingham, H.P., 2000. Marxan version 1.8.3. Available at: http://www.ecology.uq. edu.au/marxan.htm.
13
Ball, I.R.; Possingham, H.P. and Watts, M.E., 2009. Marxan & relatives: Software for spatial conservation prioritization. In Moilanen A, Wilson KA & Possingham HP (eds.). Spatial Conservation Prioritization: Quantitative Methods and Computational Tools. Oxford: Oxford University Press. pp: 185-195.
14
Bonn, A.; Rodrigues, A.S.L. and Gaston, J., 2002. Threatened and endemic species: are they good indicators of patterns of biodiversity on a national scale? Ecology Letters. Vol. 5, pp: 733-741.
15
Carwardine, J.; Rochester, W.A.; Richardson, K.S.; Williams, K.J.; Pressey, R.L. and Possingham, H.P., 2007. Conservation planning with irreplaceability: does the method matter? Biodiversity Conservation. Vol. 16, pp: 245-258.
16
Ciarleglio, M.; Barnes, W. and Sarkar, S., 2009. ConsNet: New software for the selection of conservation area networks with spatial and multi criteria analyses. Ecography. Vol. 32, pp: 205-209.
17
Delavenne, J.; Metcalfe, K.; Smith, R.J.; Vaz, S.; Martin, C.S.; Dupuis, L.; Coppin, F. and Carpentier, A., 2011. Systematic conservation planning in the eastern English Channel: comparing the Marxan and Zonation decision support tools. ICES Journal of Marine Science. Vol. 69, No. 1, pp: 75-83.
18
Elith, J.; Phillips, S.J.; Hastie, T.; Dudík, M.; Chee, Y.E. and Yates, C.J., 2011. A statistical explanation of MaxEnt for ecologists. Diversity and distributions. Vol. 17, pp: 43-57.
19
Esfandeh, S.; Kaboli, M. and Eslami, L., 2015. A chronological review on application of Marxan tool for systematic conservation planning in landscape. International Journal of Engineering and Applied Sciences (IJEAS). Vol. 2, No. 12: pp: 2439-3661.
20
Farashi, A. and Shariati, M., 2017. Biodiversity hotspots and conservation gaps in Iran. Journal for Nature conservation. Vol. 39, pp: 37-57.
21
Franklin, J., 2009. Mapping species distributions; spatial inference and prediction. Cambridge University Press.
22
Game, E.T. and Grantham, H.S., 2008. Marxan User Manual: For Marxan version 1.8.10. University of Queensland, St. Lucia, Queensland, Australia, and PacificMarine Analysis and Research Association, Vancouver, British Columbia, Canada.
23
Garson, J.; Aggarwal, A. and Sarkar, S., 2002. ResNet Manual, V.1.2. University of Texas at Austin, Biodiversity and Biocultural Conservation Laboratory.
24
Hijmans, R.J.S.E.; Cameron, J.L.; Parra, P.G. and Jones, Jarvis, A., 2005. Very high resolution interpolated climate surfaces for global land areas. International Journal of Climatology. Vol. 25, pp:1965-1978.
25
IUCN. 2003. Recommendations of the Vth IUCN World Parks Congress. World Parks Congress Durban 2003. Benefits Beyond Boundaries, Durban, South Africa, 8-17 September 2003. Available online at:http://cmsdata.iucn.org/downloads/recommendationen.pdf.
26
Jimenez-Valverde, A. and Lobo, J.M., 2007.Threshold criteria for conversion of probability of species presence to either or presence absence. Acta Oecologica. Vol. 31, pp: 361-369.
27
Lessmann, J.; Munoz, J. and Bonaccorso, E., 2014. Maximizing species conservation in continental Ecuador; a case of systematic conservation planning for biodiverse regions. Ecology and Evolution. doi: 10.1002/ece3.1102.
28
Liu, C.; White, M. and Newell, G., 2009. Measuring the accuracy of species distribution models: a review. 18th World IMACS/MODSIM Congress, Carins, Australia.
29
Margules, C.R. and Pressey, R.L., 2000. Systematic conservation planning. Nature. Vol. 405, pp:243-253.
30
Margules, C.R. and Sarkar, S., 2007. Systematic Conservation Planning. Cambridge University Press, Cambridge.
31
Moilanen, A.; Wilson, K.A. and Possingham, H.P., 2009. Spatial Conservation Prioritization: Quantitative Methods and Computational Tools. Oxford University Press, Oxford. 320 p.
32
Olson, D.M.; Dinerstein, E. and Wikramanayake, E.D., 2001. Terrestrial ecoregions of the world; a new map of life on earth. BioScience. Vol. 51, No. 11, pp:933-938.
33
Pawar, S.; Koo, M.S.; Ahmed, M.F.; Chaudhuri, S. and Sarkar, S., 2007. Conservation assessment and prioritization of areas in Northeast India: priorities for amphibians and reptiles. Biological Conservation. Vol. 136, pp:346-361.
34
Phillips, S.J., Anderson, R.P., Schapire, R.E. 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological modelling. Vol. 190, No.3, pp: 231-259.
35
Possingham, H.P.; Ball, I.R. and Andelman, S., 2000. Mathematical methods for identifying representative reserve networks. In: Ferson S, Burgman M (Eds.), Quantitative Methods for Conservation Biology. Springer-Verlag, New York, pp: 291-305.
36
Possingham, H.P.; Wilson, K.A.; Andelman, S.J. and Vynne, C.H., 2006. Protected areas. Goals, limitations, and design. pp: 507-549 in M. J. Groom, G. K. Meffe, C. R. Carroll, eds. Principles of conservation biology. 3rd ed. Sinauer Associates, Inc. Sunderland, MA.
37
Pressey, R.L., 1997. Priority conservation areas: towards an operational definition for regional assessments in: J.J. Pigram and Sundell RC, Editors, National Parks and Protected Areas: Selection, Delimitation, and Management, Centre for Water Policy Research, Armidale, New South Wales. pp: 337-357.
38
Pressey, R.L., 1998. Algorithms, politics and timber: an example of the role of science in a public, political negotiation process over new conservation areas in production forests in: R.T. Wills and Hobbs RJ, Editors, Ecology for Everyone: Communicating Ecology to Scientists, the Public and the Politicians, Chipping Norton, Surrey Beatty and Sons, NSW. pp: 73-87.
39
Pressey, R.L., 2009. The C-Plan conservation planning system: Origins, applications, and possible futures. In Moilanen A, Wilson KA & Possingham HP (eds.). Spatial Conservation Prioritization: Quantitative Methods and Computational Tools. Oxford: Oxford University Press. pp: 211-234.
40
Rondinini, C.; Chiozza, F. and Boitani, L., 2006. High human density in the irreplaceable sites for African vertebrate conservation. Biological Conservation. Vol. 133, No. 3, pp: 358-363.
41
Rodrigues, A.S.L. and Brooks, T.M., 2007. Shortcuts for biodiversity conservation planning: The effectiveness of surrogates. Annu. Rev. Ecol. Evol. Syst. Vol. 38, pp: 713-737.
42
Rouget, M.; Cowling, R.M.; Pressey, R.L. and Richardson, D.M., 2003. Identifying spatial components of ecological and evolutionary processes for regional conservation planning in the Cape Floristic Region, South Africa. Diversity and Distribution. Vol. 9, pp: 191-210.
43
Sanderson, E.W.; Jaiteh, M.; Levy, M.A.; Redford, K.H.; Wannebo, A.V. and Woolmer, G., 2002. The human footprint and the last of the wild. Bioscience. Vol. 52, pp: 891-904.
44
Soule, M.E. and Sanjayan, M.A., 1998. Ecology conservation targets: Do they help? Science. Vol. 279, pp: 2060-2061.
45
Stewart, R.R. and Possingham, H.P., 2005. Efficiency, costs and trade-offs in marine reserve system design. Environmental Modeling and Assessment. Vol. 10, pp: 203-213.
46
Wiz, M.S.; Hijmans, R.J.; Li, J.; Peterson, A.T.; Graham, C.H. and Guisan, A., 2008. Effects of sample size on the performance of species distribution models. NCEAS predicting species distribution working group, Diversity and Distribution. Vol. 14, pp: 763-773.
47
Wu, R.; Long, Y.; Malanson, G.P.; Garber, P.A. and Zhang, S., 2014. Optimized Spatial Priorities for Biodiversity Conservation in China: A Systematic Conservation Planning Perspective. PLoS ONE. Vol. 9, No. 7: e103783.
48
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی و تحلیل توان بوم شناختی منطقه حفاظت شده باشگل با رویکرد زون بندی و ارتقای سطح حفاظت
ارزیابی توان بوم شناختی سرزمین بهعنوان هسته مطالعات محیط زیستی، قبل از توسعه برای کاربریهای مختلف ضروری است. مناطق حفاظتشده برای دستیابی به اهداف پیشبینی شده براساس معیارهای IUCN، لازم است طی فرآیند ارزیابی توان محیط زیستی، زونبندی شوند. این پژوهش با هدف تعیین توان بوم شناختی و زونبندی منطقه حفاظتشده باشگل با روش تجزیه و تحلیل سیستمی جهت طبقهبندی مجدد حفاظتی آن صورت گرفت. برای نیل به آن، با تهیه نقشه منابع اکولوژیکی پایدار و ناپایدار و اقتصادی ـ اجتماعی محدوده در مقیاس 1:25000 و تجزیه و تحلیل و جمعبندی آن با سامانه اطلاعات جغرافیایی، 1012 یگان محیط زیستی در منطقه حاصل شد. از مقایسه واحدهای همگن با مدل اکولوژیکی ویژه منطقه، نقشههای توان اکولوژیکی تهیه و سپس با تلفیق و ادغام واحدهای دارای کاربری یکسان، در ابتدا نقشه پایه زونبندی و در نهایت، با اولویتبندی و ساماندهی زونهای اولیه، نقشه زونبندی نهایی بهعنوان واحدهای برنامهریزی تهیه گردید. نتایج نشان داد از کل منطقه (24399هکتار)، 24/14% (6133/14 هکتار) در زون طبیعت محدود شده، 58/41% (14250/99هکتار) در زون حفاظت شده، 0/32% (77/4 هکتار) در زون تفرج گسترده، 13/63% (3324/65 هکتار) در زون سایر استفادهها، 1/87% (456/87 هکتار) در زون بازسازی و احیاء، 0/6% (145/26 هکتار) در زون سپر بازدارنده، 0/04% (9/12 هکتار) در زون تاریخی و فرهنگی و 0/005% (1/32 هکتار) در زون اداری قرار دارد. با توجه به وسعت زیاد زون حفاظت، منطقه باشگل از ارزش حفاظتی بالا برخوردار است اما یکی از زونهای لازم (زون تفرج متمرکز) برای ارتقا به پارک ملی را ندارد.
http://www.aejournal.ir/article_85848_bd5a0ff7cc6ae0057b959f11e52ca360.pdf
2018-12-22
163
172
ارزیابی
توان اکولوژیکی
تجزیه و تحلیل سیستمی
زون بندی
منطقه حفاظت شده باشگل
سیاوش
رضازاده
rezazadeh_msr@yahoo.com
1
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، سازمان حفاظت محیط زیست، کرج، ایران، صندوق پستی: 118-31746
AUTHOR
علی
جهانی
ajahani@ut.ac.ir
2
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، سازمان حفاظت محیط زیست، کرج، ایران، صندوق پستی: 118-31746
LEAD_AUTHOR
حمید
گشتاسب
meigooni1959@gmail.com
3
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، سازمان حفاظت محیط زیست، کرج، ایران، صندوق پستی: 118-31746
AUTHOR
مجید
مخدوم فرخنده
mmakhdom@ut.ac.ir
4
گروه جنگلداری و اقتصاد جنگل، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران، صندوق پستی: 4111
AUTHOR
اسدالهی، ز.؛ دانهکار، ا. و اسدالهی، ذ.،1391. زونبندی حفاظتی تالاب چغاخور از طریق ارزیابی چندمعیاره مکانی (SMCE). فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. شماره 23، صفحات 35 تا 47.
1
امیراصلانی، ف.؛ مطهری، س. و ریاضی، ب.،1394. ارزیابی مناطق شکار ممنوع بهمنظور ارتقاء به مناطق حفاظتشده. محیط زیست طبیعی، منابع طبیعی ایران. دوره 68، شماره 1، صفحات 53 تا 65.
2
انق، ا. و جعفری، ح.، 1384. زونبندی منطقه حفاظتشده گنو با استفاده از GIS. مجله محیطشناسی. شمارة ۳۸، صفحات 39 تا 46.
3
ایلدرمی، ع.؛ دلالاوغلی، ع. و قربانی، م.، 1395. ارزیابی توان اکولوژیکی و اکوتوریسمی منطقه حفاظتشده لشگردر شهرستان ملایر. فصلنامه فضای جغرافیایی. سال 16، شماره 4، صفحات 325 تا 347.
4
پیرمحمدی، ز.؛ فقهی، ج.؛ زاهدیامیری، ق. و شریفی، م.، 1389. ارزیابی توان اکولوژیکی متناسب با رویکرد طبیعتگردی (اکوتوریسم) در جنگلهای زاگرس (مطالعه موردی: سامان عرفی چم حاجی جنگل کاکا رضا، استان لرستان). فصلنامه تحقیقات جنگل و صنوبر ایران. جلد 18، شماره 2، صفحات 230 تا 241.
5
جوزی، ع.؛رضایان، س. و آقامیری، ک.، 1391. ارزیابی توان محیط زیستی منطقه حفاظتشده ورجین بهمنظور استقرار کاربری گردشگری با استفاده از روش ارزیابی چندمعیاره مکانی(SMCEM). علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 14، شماره 1، صفحات 83 تا 96.
6
جهانی، ع.، 1395. مدلسازی آشفتگی انبوهی جنگل در ارزیابی محیطی با استفاده از شبکه عصبی مصنوعی. فصلنامه تحقیقات جنگل و صنوبر ایران، جلد 24، شماره 2، صفحات 310 تا 322.
7
جهانی، ع.؛ مخدومفرخنده، م.؛ فقهی، ج. و اعتماد، ن.، 1390. آمایش اراضی جهت مدیریت جنگل برای استفاده چندمنظوره (برداشت چوب، اکوتوریسم و حمایت) (مطالعه موردی: بخش پاتم جنگل خیرود). نشریه آمایش سرزمین. جلد 3، شماره 5، صفحات 33 تا 50.
8
دهداردرگاهی، م.؛ کرمی، م. و خراسانی، ن.، 1386. زونبندی منطقه شکار ممنوع درفک با استفاده ازGIS . مجله محیطشناسی. سال 33، شماره 43، صفحات 51 تا 60.
9
دهداردرگاهی،م.و مخدوم،م.،1381. زونبندی پارک ملی گلستان مجلة محیطشناسی. شمارة 29، صفحات 71 تا 77.
10
دهداردرگاهی،م. ومخدوم،م.، 1382. زونبندی پارک ملی کویر. مجلة منابع طبیعی ایران. جلد 56، شمارة 4، صفحات 437 تا 443.
11
گشتاسبمیگونی، ح.، 1392. طرح جامع مدیریت منطقه حفاظت شده باشگل. اداره کل حفاظتمحیط زیست قزوین. صفحات ا تا 80.
12
فراشی،آ. و شریعتی، م.، 1392. زونبندی حفاظتی پارک ملی کلاه قاضی با رویکرد ارزیابی چندمعیاره. فصلنامه محیطزیست. شماره 57، صفحات 75 تا 84.
13
مجنونیان،ه.،۱۳80. ارزیابی توان محیطزیستی پناهگاه حیاتوحش لوندویل. محیطشناسی. شماره 27، صفحات 23 تا 33.
14
مخدوم،م.،1390. شالوده آمایش سرزمین. چاپ دوازدهم. انتشارات دانشگاه تهران. 304 صفحه.
15
مخدوم،م.؛ درویشصفت،ع،ا.؛ جعفرزاده،ه.ومخدوم،ع.، 1380. ارزیابی و برنامهریزی محیط زیست با سامانههای اطلاعات جغرافیایی (GIS). انتشارات دانشگاه تهران. 309 صفحه.
16
مسعودی، م.؛ جوکار، پ. و صادقی، م.، 1394. ارزیابی توان اکولوژیک توسعه شهری، روستایی و صنعتی شهرستان داراب. فصلنامه اکوسیستمهای طبیعی ایران. سال 6، شماره 3، صفحات 49 تا 58.
17
Abdussalam, M.; Lindsay, R.G.; Malcolm, C. and Beveridge, M., 2000.Ecotourism to protect the reserve mangrove forest the Sundarbans and its flora and fauna. Anatolia. Vol. 11, No. 1, pp: 56-66.
18
Jahani, A., 2019b. Forest landscape aesthetic quality model (FLAQM): A comparative study on landscape modelling using regression analysis and artificial neural networks. Journal of Forest Science. Vol. 65, No. 2, pp: 61-69.
19
Jahani, A., 2016. Modeling of forest canopy density confusion in environmental assessment using artificial neural network. Forest and Poplar Research. Vol. 24, No. 2, pp: 310-322.
20
Jahani, A., 2019a. Sycamore failure hazard classification model (SFHCM): an environmental decision support system (EDSS) in urban green spaces. International Journal of Environmental Science and Technology. Vol. 16, pp: 955-964.
21
Jahani, A.; Makhdoum, F.M.; Feghhi, J. and Omid, M., 2016a. Optimized forest degradation model (OFDM): an environmental decision support system for environmental impact assessment using an artificial neural network, Journal of Environmental Planning and Management. Vol. 59, No. 2, pp: 222-244.
22
Jahani, A.; Makhdoum, F.M.; Feghhi, J. and Omid, M., 2016b. Environmental decision support systems (EDSSs): the study of concepts, developments and challenges from past to present. Journal of Environmental researches. Vol. 7, No. 13, pp: 175-188.
23
Jahani, A.; Makhdoum, M.; Feghhi, J. and Etemad, V., 2011. Landscape quality appraisal from lookouts for ecotourism land use (Case study: Patom district of Kheirud forest). Journal of Environment Researches. Vol. 2, No. 3, pp: 13-20.
24
Rezazadeh, S.; Jahani, A.; Makhdoum, M. and Meigooni, H.G., 2017. Evaluation of the Strategic Factors of the Management of Protected Areas Using SWOT Analysis Case Study: Bashgol Protected Area Qazvin Province. Open Journal of Ecology. Vol. 7, pp: 55-68.
25
Shirmohammadi, I.; Jahani, A.; Etemad, V.; Zargham, N. and Makhdoum, M., 2017. Environmental impact assessment in Karkas protected area using degradation model, Environmental researches. Vol. 7, No. 14, pp: 91-102.
26
Sobhani, P.; Goshtasb, H.; Nezami, B. and Jahani, A., 2017. Ecological Capability Evaluation of No Hunting Areas for a Higher Level of Protection by Using Multiple Criteria Decision Making Method (Case Study: Alvand No Hunting Area), Environment Researches. Vol. 8, No. 16, pp: 29-42.
27
Sobhani, P.; Goshtasb, H.; Nezami, B. and Jahani, A., 2018. Evaluation of Promoting Conservation Hunting Areas (Case Study: Hamedan Alvand No Hunting Area). Environment sciences and technology. Vol. 20, No. 3, pp: 143-157.
28
Verdiella, A.; Sabatini, M.; Maciel, M.C. and Rodriguez, R.M., 2005. A mathematical model for zoning of protected natural areas. International Transactions in Operational Research. Vol. 12, pp: 203-213.
29
ORIGINAL_ARTICLE
ارزش گذاری اقتصادی کارکردهای بازاری منابع جانوری (دامی پرورشی،تولیدات دامی، حیات وحش) و منابع بیولوژیک گیاهی مناطق تحت حفاظت به روش قیمت بازار
منطقه حفاظت شده لشگردر به وسعت 160/82 کیلومترمربع درشرق و جنوبشرقی ملایر قرار دارد. این منطقه به سبب ویژگیهای طبیعی دارای تنوع گیاهی و جانوری مناسبی است. بلندترین ارتفاع منطقه 2758 متر از سطح دریا ارتفاع دارد و بهلحاظ موقعیت طبیعی و توپوگرافی دارای سه وضعیت کوهستانی، تپه ماهوری و نسبتا دشتی میباشد. هدف از مطالعه حاضر بررسی اقتصادی منطقه حفاظت شده لشگردر بهمنظور برآورد ارزش کالا و خدمات در این مکان طبیعی است که این ارزشگذاری اقتصادی براساس دستورالعمل سیستم تلفیقی حسابهای اقتصادی و زیستمحیطی تدوین شده است. براساس نتایج نهایی، ارزش منابع بیولوژیک گیاهی غیرچوبی دستکاشت با یکبار بازدهی 9891000052 ریال، منابع بیولوژیک گیاهی غیرچوبی دستکاشت با بازدهی مکرر 39453812500 ریال و منابع دامی پرورشی 74955700000 و منابع حیاتوحش 6272000000 ریال و تولیدات سالانه دامهای پرورشی در منطقه 1395000000 ریال میباشد که در نهایت جمع داراییهای زیستمحیطی در منطقه 131967512554 ریال میباشد.
http://www.aejournal.ir/article_85967_29277cc853a4ec4e50171af853d53bdb.pdf
2018-12-22
173
178
لشگردر
ارزش گذاری اقتصادی
محیط زیست
دام های پرورشی
نواب
قبادی
navabd21@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، دانشگاه پیام نور، تهران، ایران، صندوق پستی: 19395-3697
LEAD_AUTHOR
راضیه
زندی پاک
zandipakr@yahoo.com
2
باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد همدان، همدان، ایران
AUTHOR
امیرنژاد،ح.،1384. تعیین ارزش کل اقتصادی اکوسیستم جنگلهای شمال ایران با تاکید بر ارزشگذاری زیستمحیطی- اکولوژیکی و ارزشهای حفاظتی. رساله دکتری، دانشگاه تربیت مدرس.
1
امیرنژاد،ح. وخلیلیان،ص.،1385. برآورد ارزش تفریحی پارکهای جنگلی ایران با استفاده از روش ارزشگذاری مشروط: مطالعه موردی پارک جنگلی سیسنگان نوشهر. منابع طبیعی ایران. جلد 59، شماره 2، صفحات 89 تا 96.
2
جعفرینژاد، م.؛ فرهنگی، م. و خانپور، ف.، 1391. ارزشگذاری اقتصادی مواهب زیستمحیطی تالاب بینالمللی گمیشان بهروش مشروط برای تعیین کاربردهای حفاظتی. مجله حفاظت و بهرهبرداری از منابع طبیعی. جلد 1، شماره 1، صفحات 51 تا 64.
3
زارعمهرجردی،م.،1385. ارزشگذاری آبهای زیرزمینی کشاورزی (مطالعه موردی کرمان)، رساله دکتری.
4
زرندریان، ا.؛ میرزاییکنسستانی، ف. و موسیزاده، ر.، 1393. ارزشگذاری اقتصادی کارکرد خودپالایی اکوسیستمهای منطقه حفاظت شده اشترانکوه در جذب پسماندها و پسابها. پژوهشهای محیط زیست. شماره 1، صفحات 111 تا 118.
5
طباطبایی، ف.، 1380. بررسی روشهای اکوسیستمهای طبیعی (مطالعه موردی: زیستگاه پرندگان تالاب میانکاله). رساله دکتری. دانشگاه تربیت مدرس.
6
لطیفیاسکویی، ن.، 1385. ارزشگذاری اقتصادی پارک جنگلی عونعلی تبریز. رساله دکتری، دانشگاه آزاد اسلامی.
7
مهندسین مشاور تام. 1386. طرح جامع مدیریت مجموعه کویر. مرحله تفضیلی، سازمان محیط زیست.
8
مهندسین مشاور تام. 1386. طرح جامع مدیریت جنگلهای بنه و بلوط حوزه آبخیز سنندج- مریوان، مرحله تفضیلی، سازمان محیط زیست.
9
Adams, C.; Seroa da Motta, R.; Arigoni Ortiz, R.; Reid, J.; Ebersbach Aznar, C.; Antonio de Almeida Sinisgalli, P., 2008. The use of contingent valuation for evaluating protected areas in the developing world: Economic valuation of Morro do Diabo State Park, Atlantic Rainforest, São Paulo State (Brazil). Ecological economics. Vol. 66, pp: 359-370.
10
Bockstael, N.; Costanza, R.; Strand, I.; Boynton, W.; Bell, K. and Wainger, L., 1995. Analysis Ecological economic modeling and valuation of ecosystems, Ecological Economics. Vol. 14, pp: 143-159.
11
Costanza, R.; d'Arge, R.; Groot, R.; Farber, S.; Grasso, M. and Hannon, B., 1997. The Value of the World’s Ecosystem Services and Natural Capital, Ecological Economics. Vol. 25, pp: 3-15.
12
De Groot, R.; Wilson, MA. And Boumans, RMJ., 2002. A typology for the classification, description and valuation of ecosystem functions, goods and services. Ecological Economics. Vol. 41, No. 3, pp: 393-408.
13
Lange, G.M. and Jiddawi, N., 2009. Economic value of marine ecosystem services in Zanzibar: implications for marine conservation and sustainable development, Ocean & Coastal Management. Vol. 52, pp: 521-532.
14
Laurans, Y. and Mermet, L., 2014. Ecosystem services economic valuation, decision-support system or advocacy? Ecosystem Services. Vol. 7, pp: 98-105.
15
Lee, C. and Han, S., 2002. Estimating the use and preservation values of national parks tourism resources using a contingent valuation method, Tourism Management. Vol. 23, pp: 531-540.
16
Naidoo, R.; Paavola, J.; Strassburg, B.; Yu, D. and Balmford, A., 2008. Ecosystem services and economic theory: integration for policy-relevant research, Ecological applications. Vol. 18, pp: 2050-2067.
17
Pearce, D. and Seccombe Hett, T., 2000. Economic valuation and environmental decision-making in Europe, Environ Sci Technol. Vol. 34, pp: 1419-1425.
18
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی پیامدهای جاده سازی بر تنوع و فراوانی گونه های مختلف پرندگان (مطالعه موردی: پارک زاینده رود، اصفهان)
توسعه شبکه حمل و نقل و تعداد رو به افزایش وسایل نقلیه در جاده ها، تهدیدی برای زیستگاه حیات وحش و پرندگان در سراسر جهان است. این پژوهش به بررسی تاثیر جاده بر تنوع و فراوانی پرندگان در پارک حاشیه زاینده رود در مجاورت یک بزرگراه اصلی پرترافیک در شهر اصفهان می پردازد. بدین منظور، سه ترانسکت با فاصله 65، 335 و 605 متر از جاده و با فاصله عرضی 270 و طولی 150 متر از یکدیگر تعیین شدند. شمارش پرندگان با استفاده از روش شمارش نقطه ای در طول هر ترانسکت تا فاصله 50 متری هر 5 دقیقه یک بار هنگام طلوع آفتاب شروع و تا ساعت 14 بعد از ظهر و با شش مرتبه تکرار در طول فصل انجام شد. با استفاده از دوربین چشمی و همین طور ردیابی صدا، پرندگان موجود در هر ترانسکت ثبت و با استفاده از منابع موجود شناسایی شد. جهت تهیه عکس از دوربین50 Canon SX استفاده گردید. در مجموع 39 گونه متعلق به 20 خانواده و 9 راسته شناسایی گردید. براساس آنالیز واریانس یک طرفه و آزمون دانکن، میانگین حضور گونه ها بین ترانسکت ها دارای تفاوت معنی دار است. شاخص جک نایف در ترانسکت سه، 73/8 درصد از غنای گونه ای را دربر دارد. شاخص های یکنواختی و ناهمگنی، بیش ترین میزان را در ترانسکت سوم نشان می دهند. میزان تنوع و تراکم پرندگان در ترانسکت سوم به دلیل دوری از جاده، وجود امنیت و پوشش گیاهی بیش تر هم چنین مجاورت با مزارع کشاورزی و زاینده رود، نسبت به ترانسکت اول که در مجاورت جاده قرار دارد، افزایش می یابد.
http://www.aejournal.ir/article_86149_6c3445c894a5fe2d267326dd03daa123.pdf
2018-12-22
179
186
غنا گونه ای
یکنواختی گونه ای
ناهمگنی
مریم
رشیدی
maryamrashidi30@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد اصفهان (خوراسگان)، اصفهان، ایران
AUTHOR
عاطفه
چمنی
atefehchamani@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد اصفهان (خوراسگان)، اصفهان، ایران
LEAD_AUTHOR
مینو
مشتاقی
m_moshtaghie@yahoo.com
3
باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، دانشگاه آزاد اسلامی، اصفهان (خوراسگان)، اصفهان، ایران
AUTHOR
اجتهادی، ح.؛ سپهری، ع. و عکافی، ح.، 1387. روش های اندازه گیری تنوع زیستی. چاپ اول، مشهد: انتشارات دانشگاه فردوسی. 255 صفحه.
1
زبیری، م.، 1386. کتاب زیست سنجی (بیومتری) جنگل. انتشارات دانشگاه تهران. 405 صفحه.
2
معینیان میمه ای، م.، 1387. سیمای طبیعی رودخانه زاینده رود (اصفهان). انتشارات جهاد دانشگاهی اصفهان.
3
منصوری، ج.، ۱۳۷۹. راهنمای صحرایی پرندگان ایران. نشر دل آویز.
4
دانشنامه پرندگان ایران. .www.iranbird.com
5
درگاه الکترونیکی شهرداری اصفهان. .http://new.isfahan.ir
6
Barnes, B.V.; Pregitzer, K.S. and Spies, T.A., 1998. Ecological forest site classification. Journal of Forest Research. Vol. 80, pp: 493-498.
7
Benitez-Lopez, A.; Alkemade, R. and Verweij, P.A., 2010. The impacts of roads and other infrastructure on mammal and bird populations: A meta-analysis. Biological Conservation. Vol. 143, pp: 1307-1316.
8
Brumm, H. and Slabbekoorn, H., 2005. Acoustic communication in noise. Advances in the Study of Behavior. Vol. 35, pp: 151-209.
9
Chen, H.L. and Koprowski, J.L., 2016a. Differential effects of roads and traffic on space use and movements of native forest-dependent and introduced edge tolerant species. PLoS ONE. Vol. 11, No. 1, pp: 1-18.
10
Elemberg, P.N.; Poeysae, H. and Sjoeberg, K., 1994. Relationship between species number, lake size and resource diversity in assemblages of breeding water. Journal of Biology. Vol. 21, pp: 75-84.
11
Fahrig, L. and Rytwinski, T., 2009. Effects of roads on animal abundance: An empirical review and synthesis. Ecology and Society. Vol. 14, 21 p.
12
Fox, A.D. and Bell, M.C., 1994. Breeding bird communities and environmental variable correlations of Scottish peatland wetlands. In Aquatic-Birds in the Tropic Web of Lakes (editor) Kerekes.J.J. pp: 297-307.
13
Furness, R. and Greenwood, J.J.D., 1993. Birds as monitors of environmental change. Chapman & Hall, London.
14
Mainwaring, M.C., 2015. The use of man-made structures as nesting sites by birds: a review of the costs and benefits. Journal for Nature Conservation. Vol. 25, pp: 17-22.
15
Manuwal, D.A., and Carey, A.B., 1991. Methods for Measuring Populations of Small, Diurnal Forest Birds, Wildlife Habitat Relationships: Sampling Procedures for Pacific Northwest Vertebrates, USDA Forest Service. General Technical Report PNW-GTR-278.
16
Morelli, F.; Beim, M.; Jerzak, L.; Jones, D. and Tryjanowski, P., 2014. Can roads, railways and related structures have positive effects on birds? A review. Transportation Research. Part D. Vol. 30, pp: 21-31.
17
Polak, M.; Wiacek, J.; Kucharczyk, M. and Orzechowski, R., 2013. The effect of road traffic on a breeding community of woodland birds. European Journal of Forest Research. Vol. 132, pp: 931-941.
18
Rao, S. and Kumar Koli, V., 2017. Edge effect of busy high traffic roads on the nest site selection of birds inside the city area: Guild response. Transportation Research Part D. Vol. 51, pp: 94-101.
19
Salek, M.; Svobodova, J. and Zasadil P., 2010. Edge effect of low-traffic forest roads on bird communities in secondary production forests in central Europe. Landscape Ecology. Vol. 25, pp: 1113-1124.
20
Sauer, J.; Hines, J.; Fallon, J.; Paedieck, K.; Ziolkowski. D. and Link, W., 2011. The North American breeding birds survey, results and analysis 1966–2009. Laurel, MD: USGS Patuxent Wildlife Research Center.
21
Summers, P.D.; Cunnington, G.M. and Fahrig L., 2011. Are the negative effects of roads on breeding birds caused by traffic noise? J of Applied Ecology. Vol. 48, pp: 1527-1534.
22
Van Sterien, A.J.; Pannekoek, J. and Gibbons, D.W., 2001. Indexing European trends using results of national monitoring: a trial of a new methods. Bird Study. Vol. 48, pp: 200-213.
23
Wiacek, A.J.; Polaka, M.; Kucharczyka, M. and Bohatkiewiczb, J., 2015. The influence of road traffic on birds during autumn period: Implications for planning and management of road network. Landscape and Urban Planning. Vol. 134, pp: 76-82.
24
Wight, P., 2002. Supporting the principles of sustainable development in tourism and ecotourism: Governments’ potential role. Current Issues in Tourism. Vol. 5, pp: 222-243.
25
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر عصارة هیدروالکلی زرشک به تنهایی و در ترکیب با پوشش خوراکی زئین ذرت حاوی اسانس پیاز بر روی فساد میکروبی گوشت سینة مرغ در شرایط یخچال
رویکرد جدید صنایع غذایی استفاده از نگهدارنده های طبیعی به جای مصنوعی است. مطالعه ای به منظور معرفی یک محصول کام پذیر و پایدار که درنتیجة غوطه وری گوشت سینة مرغ در عصارة زرشک و زئین ذرت غنی شده با اسانس پیاز، در شرایط یخچال صورت گرفت. تیمارهای مورد بررسی شامل نمونه های غوطه وری شده در آب مقطر استریل، نمونه های غوطه وری شده در عصارة زرشک 1/5%، نمونه های غوطه وری شده در عصارة زرشک 3%، نمونه های غوطه وری شده در عصارة زرشک 1/5% و زئین ذرت، نمونه های غوطه وری شده در عصارة زرشک 3% و زئین ذرت،نمونه های غوطه وری شده در عصارة زرشک 1/5% و زئین ذرت غنی شده با اسانس پیاز 2% و نمونه های غوطه وری شده در عصارة زرشک 3% و زئین ذرت غنی شده با اسانس پیاز 2% بودند. نمونه ها در دمای 1±4 درجه ساتنی گراد به مدت 15 روز نگه داری شده و در فواصل 3 روز مورد آزمایش قرار گرفتند، تمامی تیمارها به طور معنی داری جمعیت باکتری های مزوفیل هوازی، گونه های سودوموناس، باکتری های اسیدلاکتیک، انتروباکتریاسه، باکتری های سایکروتروف و کپک-مخمر را در مقایسه با گروه شاهد کاهش دادند. هم چنین پوششدهی توسط زئین ذرت غنی شده با اسانس پیاز به طور معنی داری این اثرات را بهبود بخشید. براساس یافته های به دست آمده، نتیجه گیری می شود که عصارة زرشک می تواند در ترکیب با پوشش خوراکی زئین ذرت حاوی اسانس پیاز موجب کاهش رشد باکتری های عامل فساد گوشت سینة مرغ در شرایط یخچال شود.
http://www.aejournal.ir/article_86167_f53e5ca83fa75d1392973d51bb0c951f.pdf
2018-12-22
187
194
عصارة زرشک
پوشش خوراکی زئین ذرت
اسانس پیاز
نگه دارندة طبیعی
گوشت سینة مرغ
دعا
موسوی پارسا
doa.mousavi@gmail.com
1
گروه بهداشت و کنترل کیفی مواد غذایی، دانشکدة پیرادامپزشکی، دانشگاه بوعلیسینا، همدان، ایران
AUTHOR
بهناز
بازرگانی گیلانی
b.bazargani@basu.ac.ir
2
گروه بهداشت و کنترل کیفی مواد غذایی، دانشکدة پیرادامپزشکی، دانشگاه بوعلیسینا، همدان، ایران
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
پژوهی الموتی
pajoohii@gmail.com
3
گروه بهداشت و کنترل کیفی مواد غذایی، دانشکدة پیرادامپزشکی، دانشگاه بوعلیسینا، همدان، ایران
AUTHOR
تاجیک، ح.؛ مهدی زاده، ت. و مایلی، م.، 1395. اثر ترکیبی پوشش زئین حاوی عصارههای متانولی و اتانولی پوست نارنج و بسته بندی وکیوم بر زمان ماندگاری ماهی قزل آلای نگه داری شده در یخچال. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه.
1
رنجبر، م.؛ شریفان، ا.؛ شعبانی، ش. و امین افشار، م.، 1392. بررسی اثر عصارة سیر بر باکتری های استافیلوکوکوس اورئوس و اشریشیا کلا در مدل غذایی گوشت مرغ آمادة طبخ. نشریه علوم غذایی و تغذیه. دوره 11، شماره 4، صفحات 57 تا 66.
2
Albu, S.; Jaico, E.; Paniwnyk, L.; Lorimer, J.P. and Mason, T., 2004. Potential for the use of ultrasound in the extraction of antioxidants from Rosmarinus officinalis for the food & pharmaceutical industry. Ultrasonics Sonochemistry. Vol. 911, pp: 261-265.
3
Aliakbarlu, J. and Mohammadi, SH., 2015. Effect of sumac (Rhus coriaria L.) and barberry (Berberis vulgaris L.) water extracts on microbial growth and chemical changes in ground sheep meat. Journal of food processing and preservation. Vol. 39, pp: 1859-1866.
4
Bazargani-Gilani, B.; Aliakbarlu, J. and Tajik, H., 2015. Effect of pomegranate juice dipping and chitosan coating enriched with Zataria multiflora Boiss essential oil on the shelf-life of chicken meat during refrigerated storage. Innovative Food Science & Emerging Technologies. Vol. 29, pp: 280-287.
5
Benkeblia, N., 2004. Antimicrobial activity of essential oil extracts of various onions (Allium cepa) and garlic (Allium sativum). Lebensm. Wiss. u.-Technol. Vol. 37, pp: 263-268.
6
Burt, S., 2004. Essential oils: their antibacterial properties and potential applications in foods a review. International Journal of Food Microbiology. Vol. 94, pp: 223-253.
7
Georgantelis, D.; Ambrosiadis, I.; Katikou, P.; Blekas, G. and Georgakis, S.A., 2007. Effect of rosemary extract, chitosan and α-tocopherol on microbiological parameters and lipid oxidation of fresh pork sausages stored at 4 C. Meat Science. Vol. 76, No. 1, pp: 172-181.
8
Giatrakou, V.; Ntzimani, A.; Zwietering, M. and Savvaidis, I.N., 2010. Combined chitosanthyme treatments with modified atmosphere packaging on a Greek Ready to Cook (RTC) poultry product. Journal of Food Protection. Vol. 73, pp: 663-669.
9
Giatrakou, V. and Savvaidis, I.N., 2012. Bioactive packaging technologies with chitosan as a natural preservative agent for extended shelf-life food products. In: Arvanitoyannis, I. (Ed.), Modified Atmosphere and Active Packaging Technologies. Taylor & Francis, Boca Raton, FL. pp: 685-730. Chapter 16.
10
Göğüş, U.; Bozoglu, F. and Yurdugul, S., 2004. The effects of nisin, oil-wax coating on the quality of refrigerated chicken meat. Food Control. Vol. 15, pp: 537-542.
11
Hassanpour, H. and Alizadeh, S.H., 2016. Evaluation of phenolic compound, antioxidant activities and Antioxidant enzymes of barberry genotypes in Iran. Scientia Horticulturae. Vol. 200, pp: 125-130.
12
Hwang, H. and Beuchat, L.R., 1995. Efficacy of selected chemicals for killing pathogenic and spoilage microorganisms on chicken skin. Journal of Food Protection. Vol. 58, pp: 19-23.
13
Ibrahim Sallam, K., 2007. Antimicrobial and antioxidant effects of sodium acetate, sodium lactate, and sodium citrate in refrigerated sliced salmon. Food Control. Vol. 18, pp: 566-575.
14
Jay, J.M.; Lossener, M.J. and Golden, D.A., 2005. Modern Food Microbiology, 7th Edition. Springer, New York. pp: 523-530.
15
Latou, E.; Mexis, S.F.; Badeka, A.V.; Kontakos, S. and Kontominas, M.G., 2014. Combined effect of chitosan and modified atmosphere packaging for shelf life extension of chicken breast fillets. LWT-Food Science and Technology. Vol. 55, pp: 263-268.
16
Moradi, M.; Tajik, H.; Rohani, S.M.R. and Mahmoudian, A., 2016. Antioxidant and antimicrobial effects of zein edible film impregnated with Zataria multiflora Boiss. essential oil and monolaurin. LWT-Food Science and Technology. Vol. 72, pp: 37-43.
17
Pena-Serna, C.; Lúcia Barretto Penna, A. and Francisco Lopes Filho, J., 2016. Zein-based blend coatings: Impact on the quality of a model cheese of short ripening period. Journal of Food Engineering. Vol. 171, pp: 208-213.
18
Riazi, F.; Zeynali, F.; Hosseni, E. and Behmadi, H., 2015. Determination of the minimum inhibitory concentration of the barberry extract and the dried residue of red grape and their effects on the growth inhibition of sausage bacteria by using response surface methodology (RSM). Nutrition and Food Sciences Research. Vol. 2, pp: 55-63.
19
Vaithiyanathan, S.; Naveena, B.M.; Muthukumar, M.; Girish, P.S. and Kondaiah, N., 2011. Effect of dipping in pomegranate (Punica granatum) fruit juice phenolic solution on the shelf life of chicken meat under refrigerated storage (4 °C). Meat Science. Vol. 88, pp: 409-414.
20
Ye, C.L.; Dai, D.H. and Hu, W.L., 2013. Antimicrobial and antioxidant activities of the essential oil from onion (Allium cepa L.). Food Control. Vol. 30, pp: 48-53.
21
Zohri, A.N.; Abdel-Gawad, K. and Saber, S., 1995. Antibacterial, antidermatophytic and antitoxigenic activities of onion (Allium cepa L.) oil. Microbiology Research. Vol. 150, pp: 167-172.
22
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تاثیر سطوح تغذیهای اسانس سنبل کوهی(Valerian) و مرزن جوش(Oregano) بر بیان ژن اینترفرون گاما در جوجههای گوشتی
گیاهان دارویی بهدلیل خواص چندگانه در پیشگیری و درمان بسیاری از بیماریهای دام و طیور بهجای آنتیبیوتیکها استفاده زیادی دارد. در این مطالعه تغییرات بیان ژن اینترفرون گاما (IFNg) با افزودن اسانس گیاهان دارویی سنبل کوهی و مرزن جوش در جیره جوجههای گوشتی آرین مورد بررسی قرار گرفت. آزمایش در قالب طرح کاملاً تصادفی با 7 تیمار و 4 تکرار انجام شد. تیمارهای آزمایشی شامل شاهد، آنتیبیوتیک، پروبیوتیک و اسانس گیاهان دارویی سنبل کوهی و مرزن جوش در سطوح 200 و 400 میلیگرم در کیلوگرم بود. صفات میانگین وزن بدن در 6 هفتگی، میزان خوراک مصرفی، ضریب تبدیل غذایی و میزان بیان ژن IFNg اندازهگیری شد. برای بررسی بیان ژن، پس از استخراج RNA از بافت کبد جوجهها، cDNA ساخته شد و روش Semi-Quantitative RT-PCR بهکار رفت. برای بررسی تاثیر تیمارهای آزمایشی بر صفات و مقایسه میانگین تیمارها از رویه GLM و آزمون دانکن (0/05>p) در نرمافزار 9 SAS استفاده شد. نتایج نشان داد که بیان ژن IFNg در سطوح مختلف تیمارها تفاوت معنیداری دارد بهطوریکه در تیمار مرزنجوش(400میلیگرم در کیلوگرم)بیشترین و در تیمارسنبلکوهی (200میلیگرم در کیلوگرم) کمترین میزان بیان مشاهده شد. بهطورکلی نتایج این تحقیق نشان داد که استفاده از مرزن جوش در جیره جوجههای گوشتی باعث بهبود عملکرد سیستم ایمنی و کاهش میزان تلفات میشود.
http://www.aejournal.ir/article_86195_4a07cb32d400aa52ccf890df943c0ade.pdf
2018-12-22
195
202
بیان ژن
جوجه گوشتی
عملکرد
گیاهان دارویی
حمیدرضا
سیدآبادی
h_seyedabadi@yahoo.com
1
موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
AUTHOR
سیما
ساور سفلی
simasavar@gmail.com
2
موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
علی
نوری امامزاده
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، واحد گرمسار، دانشگاه آزاد اسلامی، گرمسار، ایران
AUTHOR
حسین
صفری
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، واحد گرمسار، دانشگاه آزاد اسلامی، گرمسار، ایران
AUTHOR
روستائیعلیمهر، م.؛ باهرقهرمانیزهرائی،ب.وحقیقیان رودسری، م.،1392. اثر عصاره گیاه سرخارگل بر عملکرد، پاسخهای ایمنی سلولی و هومورال جوجههای گوشتی. مجله دامپزشکی ایران. دوره 9، شماره 2، صفحات 60 تا 70.
1
روفچائی، ا.؛ ایرانی، م.؛ ابراهیمزاده، ع. و رئیسی، م.، 1389. تاثیر سطوح مختلف اسانس گیاه مرزنجوش بر عملکرد و خصوصیات لاشه جوجه های گوشتی. پنجمین همایش ایده های نو در کشاورزی. دانشگاه آزاد اسلامی واحد خوراسگان.
2
سیدآبادی، ح.ر.؛ ساورسفلی، س. و ایسوندی، ش.، 1395. اثر سطح ترئونین جیره آغازین بر بیان ژن اینترفرون گامای موثر بر سیستم ایمنی در جوجههای گوشتی سویه آرین. ششمین همایش سراسری کشاورزی و منابع طبیعی پایدار.
3
صمدیان، ف.؛ کریمیترشیزی، م.ا.؛ انصاریپیراسرایی، ز.؛ واثقی،ح.؛محمدنژاد، ف. و واحدی، ح.، 1394. اثر سطوح مختلف اسانس نعناع، لیمو، آویشن و زنیان بر عملکرد، فراسنجههای خونی و بیان ژنهای لیپوژنیک کبدی در جوجههای گوشتی. نشریه پژوهشهای علوم دامی ایران. جلد 7، شماره 3، صفحات 329 تا 339.
4
کمالیسنگانی، ا.؛ مسعودی، ع.ا. و حسینی، ع.، 1391. بررسی تاثیر گیاهان دارویی زردچوبه، آویشن و دارچین بر بیان ژن ROCK1 در بافت ریه جوجههای گوشتی. سومین همایش بیوتکنولوژی کشاورزی ایران.
5
محیطیاصل، م.؛ حسینی، ع.؛ میمندیپور، ا. و مهدوی، ع.، 1389. گیاهان دارویی در تغذیه دام وطیور. انتشارات الهادی قم 317 صفحه، چاپ اول.
6
مصدق، ر.؛ سالاری، س.؛ ساری، م.؛ محمدآبادی، ط. و تقی زاده، م.، 1392. مقایسه اثر افزودن اسانس گیاه دارویی بومی مرو تلخ با آنتی بیوتیک ویرجینیامایسین بر عملکرد، متابولیتهای خون و برخی از فراسنجههای ایمنی جوجههای گوشتی. نشریه پژوهشهای علوم دامی ایران. شماره 5، صفحات 20 تا 27.
7
موسوی، م.؛آخوندزادهبستی،ا.؛ میثاقی، ع. و جباریخامنه، ح.، 1389. اثر اسانس گیاه آویشن شیرازی بر روی میزان رشد سالمونلا تیفیموریوم در سوپ جو تجارتی. یازدهمین کنگره دامپزشکی ایران.
8
Botsoglou, N.A.; Florou-Paneri, P.; Christaki, E.; Fletouris, D.J. and Spais, A.B., 2002. Effect of dietary oregano essential oil on performance of chickens and on iron induced lipid oxidation of breast, thigh and abdominal fat tissues. British Poultry Science. Vol. 43, pp: 223-230.
9
Cross, D.E.; Mcdevitt, R.M.; Hillman, K. and Acamovic, T., 2007. The effect of herbs and their associated essential oils on performance, dietary digestibility and gut microflora in chickens from 7 to 28 days of age. Brit. Poult. Sci.Vol. 48, pp: 496-506.
10
Ertas, O.; Guler, T.; Ciftci, M.; Dalkilic, B. and Yılmaz, O., 2005. The effect of a dietary supplement coriander seeds on the fatty acid composition of breast muscle in japanese quail. Revue Med Vet. Vol. 156, No. 10, pp: 514-518.
11
Haghighi, H.R.; Abdul-Careem, M.F.; Dara, R.A.; Chambers, J.R. and Sharif, S., 2008. Cytokine gene expression in chicken cecal tonsils following treatment with probiotics and Salmonella infection.Vet Microbiol. Vol. 1, No. 126, pp: 225-233.
12
Hernandez, F.; Madrid, J.; Garcia, V.; Orengo, J. and Megias, M.D., 2004. Influence of two plant extracts on broiler performance digestibility and digestive organ size. Journal of Poultry Science. Vol. 83, pp: 169-174.
13
Janet, B.; Ahmed, K.A.; Tyagi, P.; Saxena, M. and Saxena, V.K., 2008. Effects of supplemental chromium on interferon-gamma (IFN-gamma) mRNA expression in response to Newcastle disease vaccine in broiler chicken. Research in Veterinary Science. Vol. 1, pp: 46-51.
14
Kashofer, K.1.; Viertler, C.; Pichler, M. and Zatloukal, K., 2013. Quality control of RNA preservation and extraction from paraffin-embedded tissue: implications for RT-PCR and microarray analysis. PLoS One.Vol. 8, No. 7, pp: 70714.
15
Kogut, M.H.; Rothwell, L. and Kaiser, P., 2005. IFN gamma priming of chicken heterophils upregulates the expression of proinflammatory and Th1 cytokine mRNA following receptor-mediated phagocytosis of Salmonella enterica serovar enteritidis. J Interferon Cytokine Res. Vol. 25, No. 2, pp: 73-81.
16
Lee, K.W.; Everts, H.; Kappert, H.J.; Yeom, K.H. and Beynen, A.C., 2002. Dietary carvacrol lowers body weight gain but improves feed conversion in female broiler chickens. J. Appl. Poult. Res. Vol. 12, pp: 394-399.
17
Lesson, S., 1984. Growth and carcass characteristic of broiler chickens fed virginiamycin. Nutr Res Vol. 29, pp: 1383-1389.
18
Lowenthal, J.W.; Digby, M.R. and York, J.J., 1995. Production of interferon-gamma by chicken T cells. J Interferon Cytokine Res. Vol. 15, No. 11, pp: 933-938.
19
NRC. 1994. Nutrient Requirements of Poultry. 9th Ed. Natl. Acad. Sci., Washington DC.
20
Nasir, Z., 2008. Comparison effects of Echinacea purpurea juices and Nigella sativa seeds on performance, some blood parameters, carcass and meat quality of broilers. Ph. D. dissertation, Institute of Animal Breeding and Husbandry University of Hohenheim, Stuttgart. pp: 7-18.
21
Ocak, N.; Erener, F.; Burak, A.K.; Sungu, M.; Altop, A. and Ozmen, A., 2008. Performance of broilers feed diets supplemented with dry peppermint (Mentha piperita L.) or thyme (Thymus vulgaris L.) leaves as growth promoter source. Czech Journal of Animal Science. Vol. 53, No. 4, pp: 169-175.
22
SAS Institute Inc. 2004. SAS. STAT User's Guide: Version 9. SAS Institute Inc., Cary, North Carolina.
23
Schroder, K., 2004. Interferon-gamma: an overview of signals, mechanisms and functions. Journal of Librarianship. Vol. 75, No. 2, pp:163-169.
24
Sean, CA.; Xing, Z.; Lia, J. and Carol, J.C., 2009. Immune-related gene expression in response to H11N9 low pathogenic avian influenza virus infection in chicken and Pekin duck peripheral blood mononuclear cells. Molecular Immunology. Vol. 46, pp: 1744-1749.
25
Sijben, J.W.; Klasing, K.C.; Schrama, J.W.; Parmentier, H.K.; Van der Poel, J.J.; Savelkoul, H.F. and Kaiser, P., 2003. Early in vivo cytokine genes expression in chickens after challenge with Salmonella typhimurium lipopolysaccharide and modulation by dietary n-3 poly unsaturated fatty acids. Dev Comp Immunol. Vol. 27, No. 6-7, pp: 611-619.
26
Singh, R.; Jain, P.; Pandey, N.K.; Saxena, V.K.; Saxena, M.; Singh, K.B.; Ahmed, K.A. and singh, R.P., 2012. Cytokines expression and nitric oxide production under Induced Infection to Salmonella Typhimurium in Chicken Lines Divergently Selected for Cutaneous Hypersensitivity. Asian-Aust. J. Anim. Sci. Vol. 25, No. 7, pp: 1038-1044.
27
Windisch, W.; Shedle, K. and Kroismayr, A., 2008. Use of phytogenic products as feed additives for swine and poultry. J Anim Sci. Vol. 86, pp: 140-148.
28
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی فون سوسمارهای منطقه حفاظت شده اساس در استان مازندران
منطقه حفاظت شده اساس با مساحت 2997 هکتار در جنوب شهرستان سوادکوه واقع در شرق جاده ارتباطی قائمشهر- تهران در استان مازندران قرار دارد. از آن جا که اطلاعات دقیقی از خزندگان این منطقه در دست نبود این مطالعه با هدف بررسی فون سوسمارهای منطقه حفاظت شده اساس از فروردین ماه 1393 تا اواخر آبانماه 1393 انجام گرفته است. در طی مدت تحقیق، 49 نمونه سوسمار از قسمت های مختلف منطقه جمع آوری گردید و در مجموع، هفت گونه از هفت جنس و پنج خانواده شناسایی شدند که عبارت بودند از: گونه Paralaudakia caucasia از خانواده Agamidae، گونه های Anguis colchica orientalis و Pseudopus apodus apodus از خانواده Anguidae، گونه Tenuidactylus caspius caspiusاز خانواده Gekkonidae، گونه های Darevskia caspica و Lacerta strigata از خانواده Lacertidae و گونه Ablepharus pannonicus از خانواده Sincidae. از زیرراسته سوسمارها بیش ترین تعداد مشاهده شده مربوط به Darevskia caspica با 12 نمونه و فراوانی 27 درصد و کم ترین تعداد مربوط به Tenuidactylus caspius caspiusبا 4 نمونه و فراوانی 9 درصد میباشد.
http://www.aejournal.ir/article_86777_c05b2eaeaf7e5fe5fae7003534889a78.pdf
2018-12-22
203
210
فون
منطقه حفاظت شده اساس
خزندگان
سوسمارها
مازندران
مونا
ابراهیمی رهنما
m_ebrahimi9165@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران، کدپستی: 3699631113
AUTHOR
ویدا
حجتی
vida.hojati@gmail.com
2
گروه زیست شناسی، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران، کدپستی: 3699631113
LEAD_AUTHOR
هومن
شجیعی
drhshajiee@gmail.com
3
گروه زیست شناسی، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران، کدپستی: 3699631113
AUTHOR
افتخاریان، س.؛ حجتی، و. و شرفی، ش.، 1396. بررسی فون سوسمارها و لاک پشت های منطقه شکارممنوع هزارجریب در استان مازندران. محیط زیست جانوری، سال 9، شماره 2، صفحات 130 تا 121.
1
حجتی، و.؛ کمی، ح.ق. و فقیری، ا.، 1385. بررسی فونستیک سوسماران منطقة دامغان. مجله زیست شناسی ایران. جلد 19، شماره 3، صفحات 340 تا 325.
2
حجتی، و. و فقیری، ا.، 1388. مقایسه بیومتری سه جمعیت از جکوی انگشت خمیده خزری Cyrtopodioncaspium در بخش های شمالی ایران. زیست شناسی جانوری. سال 2، شماره 2، صفحات 51 تا 56.
3
حجتی، و.؛ مقدس، د. و فقیری، ا.، 1388. شناسایی دوزیستان و خزندگان پارک ملی شهید زارع ساری. زیست شناسی جانوری. سال 1، شماره 3، صفحات 31 تا 38.
4
حجتی، و.؛ فقیری، ا. و بابایی سواسری، ر.، 1390. بررسی فون دوزیستان و خزندگان پارک ملی کیاسر در استان مازندران. زیست شناسی جانوری. سال 4، شماره 2، صفحات 33 تا 40.
5
حجتی، و.؛ درخشانپور، س. و عباسپور، ح.، 1395. بررسی فونستیک سوسمارهای منطقه حفاظت شده پرور در استان سمنان. محیط زیست جانوری. سال 8، شماره 4، صفحات 121 تا 130.
6
رستگارپویانی، ن.؛ جوهری، م. و رستگارپویانی ا.، 1386. راهنمای صحرایی خزندگان ایران (جلد اول: سوسماران). انتشارات دانشگاه رازی. 268 صفحه.
7
سازمان حفاظت محیط زیست ایران.1390. لیست مناطق چهارگانه سازمان حفاظت محیط زیست. فروردین ۱۳۹5، بازبینیشده در ۲1 فروردین ۱۳۹5.
8
سلیمان فلاح، د.، 1392. بررسی فونستیک دوزیستان و خزندگان منطقه شکار ممنوع سفید کوه و آرسک استان سمنان. پایاننامه کارشناسی ارشد بیوسیستماتیک جانوری، دانشگاه آزاد اسلامی واحد دامغان. 117 صفحه.
9
فیروز، ا.، 1387. حیاتوحش ایران مهره داران. مرکز نشر دانشگاهی. 491 صفحه.
10
کمالی، ک.، 1392. راهنمای میدانی خزندگان و دوزیستان ایران، انتشارات ایران شناسی، 368صفحه
11
نبوی، ش.؛ کمی، ح.ق. و حجتی، و.، 1392. مطالعه فونستیک خزندگان پناهگاه حیات وحش میانکاله در استان مازندران. زیست شناسی جانوری. سال 6، شماره 1، صفحات 77 تا 87.
12
Anderson, S.C., 1999. The Lizards of Iran. Oxford, Ohio.
13
Safaei-Mahroo, B.; Ghaffari, H.; Fahimi, H.; Broomand, S.; Yazdanian, M.; Najafi Majd, E.; Hosseinian Yousefkhani, S.S.; Rezazadeh, E.; Hosseinzadeh, M.S.; Nasrabadi, R.; Rajabizadeh, M.; Mashayekhi, M.; Motesharei, A.; Naderi, A. and Kazemi, S.M., 2015. The Herpetofauna of Iran: Checklist of Taxonomy, Distribution and Conservation Status. Asian Herpetological Research. Vol. 6, No. 4, pp: 257-290.
14
Smid, J.; Moravec, J.; Kodym, P.; Kratochvil, L.; Hosseinian Yousefkhani, S.; Rastegar-Pouyany, E. and Frynta, D., 2014. Annotated checklist and distribution of the lizards of Iran. Zootaxa. Vol. 3855, No. 1, pp: 001-097.
15
Uetz,P. and Hosek,J., 2016. The reptile database. Accessible at http://www.reptile-database.org.
16
ORIGINAL_ARTICLE
مدل سازی زیستگاه لانه گذاری لاک پشت سبز (Chelonia mydas) با استفاده از روش AHP و GIS در نوار ساحلی چابهار، جنوب ایران
لاک پشت سبز (Chelonia mydas) یکی از گونه های در معرض خطر می باشد که در سواحل چابهار در جنوب ایران لانه گذاری می کند. کار شناسایی و ارزیابی نقاط لانه گذاری این گونه در سال 1393 و با استفاده از یک گروه کاری 4 نفره در محدوده ای به وسعت 40 هکتار در چهار نقطه ساحلی با نام لیپار، رمین، کچو و تنگ با متوسط فاصله 40 کیلومتر انجام گرفت. در مجموع 26 لانه لاک پشت سبز شناسایی و زیست سنجی لاک پشت ها و تخم ها انجام گرفت. برای مشخص کردن مکان های مناسب لانه گذاری این گونه، از روش ترکیب خطی وزن دار به روش AHP و با کمک نرم افزار GIS استفاده گردید. نتایج نشان داد بالاترین موفقیت لانه گذاری در ساحل لیپار (80%) در مقایسه با سواحل رمین (60%)، کچو (50%) و تنگ (42/8%) بوده است. متوسط تعداد تخم در مجموع 26 لانه این گونه، برابر 47/8±99/42 به دست آمد. نتایج نشان داد که نقاط تخم گذاری لاک پشت سبز در بافت درشت خاک با عرض زیادتر ساحل که از نقاط گردشگری، جاده و مصب دور و به محل تجمع پرندگان نزدیک است انجام می شود که انطباق زیادی بین زیستگاه های حضور گونه و زیستگاه مطلوب مدل سازی شده برای لاک پشت های سبز در منطقه چابهار وجود دارد.
http://www.aejournal.ir/article_86827_7694cc9a213b52f7a1a410ce3ea1fd19.pdf
2018-12-22
211
218
لاک پشت سبز
مدل سازی
مناطق لانه گذاری
AHP
شیرین
آقا نجفی
shirinaghanajafi@gmail.com
1
گروه محیط زیست، واحد میبد، دانشگاه آزاد اسلامی، میبد، ایران
LEAD_AUTHOR
اشرفعلی
حسینی
ashhosseini@chmail.ir
2
گروه محیط زیست، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
اداره کل حفاظت محیط زیست سیستان و بلوچستان. 1389. طرح جامع مطالعاتی چابهار. صفحات 30 تا 45.
1
سعیدپور،ب.، 1381. بررسی بیواکولوژی لاک پشت های دریایی در شمال خلیج فارس، حوزه آب های هرمزگان. رساله دکتری، دانشگاه آزاد اسلامی، واحدعلوم و تحقیقات. 360 صفحه.
2
سعیدپور، ب.؛ سواری، ا. و احمدی، م.، ۱۳۸۲. بررسی برخی صفات زیستی لاک پشت های دریایی در جزیره هرمز و هنگام. پژوهش و سازندگی در اموردام و آبزیان. شماره 6۱، صفحات ۷۶ تا ۸۰.
3
سلمان ماهینی، ع.؛ رشیدی، پ.؛ مخدوم، م.؛ علیزاده، ا.؛ میکائیلی، ع. و مرادی، ح.، 1389. انتخاب سیستماتیک لکه های حفاظتی استان گلستان با استفاده از روش نظام ارزیابی و اولویت بندی حفاظت. پژوهش های محیط زیست. شماره 14، صفخات 1 تا 12.
4
Bourjea, J.; Dalleau, M.; Derville, S.; Beudard, F.; Marmoex, C.; Soili, A.M.; Roos, D.; Ciccione, S. and Frazier, J., 2015. Seasonality, abundance, and fifteen-year trend in Green Turtle nesting activity at Itsamia, Moheli, Comoros. Endangered Species Research. Vol. 27, pp: 265-276.
5
Brendan, J.; Godley, A.C.; Graeme, B. and Hays, C., 2001. Nesting of green turtles (Chelonia mydas) at Ascension Island, South Atlantic. Biological Conservation. Vol. 97, pp: 151-158.
6
Broderick, A.C.; Glen, F.; Godley, B.J. and Hays, G.C., 2001. Estimating the number of green and loggerhead turtles nesting annually in the Mediterranean. Oryx. Vol. 36, pp: 1-9.
7
Firdous, F., 2001. Sea Turtle Conservation and Education InKrachi, Pkistain. Asean Review of Biodiversity and Environmental Conservation. pp: 1-10.
8
Frazer, N.B. and Richardson, J.I., 1985. Annual variation in clutch White, M. (1998) Expedition Report. Kefalonian Marine Turtle size and frequency for loggerhead turtles, Carettacaretta, Project.nesting at Little Cumberland Island, Gerogia, USA. Herpetologica. Vol. 41, pp: 246-251.
9
Ischer, T.; Ireland, K. and Booth, D.T., 2009. Locomotion performance of Green Turtle hatching from the Heron Island rookery, Great Barrier Reef. Marine Biology. Vol. 156, pp: 1399-1409.
10
Ozdilek, S.Y.; Akdeniz, B.; Firat, A.R.; Balkan, E.I.; Gursoy, S.; Sonmez, B. and Erdogan, H., 2015. Green Thurtels feeding on Invasive Algae Caulerpa taxifolia in Turkey. Russian journal of Herpetology. Vol. 22, pp: 139-142.
11
Mendonca, V.M.; AL-Saady, S.; Al-Kiyumi, A. and Erzini, K., 2010. Interaction between Green Turtle (chelonian mydas) and Foxes (Vulpesvulpes Arabica, V. rueppelliisabaea, and V. cana) on turtles nesting grounds in the northwestern indian ocean: Impacts of the Fox Community on the Behavior of Nesting Sea Turtles at the Ras Al Hadd Turtle Reserve, Oman. Zoological Studies. Vol. 49, pp: 437-452.
12
Waqas, U.; Hasnain, S.A.; Ahmad, E.; Abbasi, M. and Pandrani, A., 2011. Conservation of Green Turtle (Chelonia mydas) at Daran Beach, Balochistan. Pakistan Journal Zoology. Vol. 43, pp: 85-90.
13
IUCN Red List of Threatened Species. 2015. Columba palumbus. Retrieved August 20, 2015, from http://www.iucnredlist.org.
14
Mazor, T.; Levin, N.; Possingham, H.P.; Levy, Y.; Rocchini, D.; Richardsonf, A.J. and Kark, S., 2013. Can satellite-based night lights be used for conservation? The case of nesting sea turtles in the Mediterranean. Biological Conservation. Vol. 159, pp: 63-72.
15
ZaheerKhan, M.; Ghalib, S.A. and Hussain, B., 2010. Status and New Nesting Sites of Sea Turtlesin Pakistan. Chelonian Conservation and Biology. Vol. 9, pp: 119-123.
16
Zarate, P.; Bjorndal, K.A.; Parra, M.; Dutton, P.H.; Seminoii, J. and Bolten, A.B., 2013. Hatching and emergence success in Green Turtle Chelonia mydas nests in the Galapagos Island. Vol. 19, pp: 217-229.
17
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی پراکندگی و ریخت سنجی دوزیستان منطقه لواسانات در استان تهران
دوزیستان جانورانی هستند که بخشی از زندگی خود را در آب و بخشی را در خشکی می گذرانند. نمونه برداری از دوزیستان منطقه لواسانات به صورت تصادفی با استفاده از تور دستی از 8 منطقه مهم آن در سال 1393 در فصول بهار و تابستان انجام شد. با بررسی نمونه های تهیه شده مشخص شد که یک گونه قورباغه ridibunda ridibundaPelophylax و یک گونه وزغ Pseudepidalea viridis viridis در این منطقه زیست می کنند. نتایج حاصل از اثر ایستگاه بر میانگین پراکندگی جمعیتی هر گونه نشان داد اختلاف معنی دار در میانگین جمعیتی گونه Pelophylax ridibunda ridibunda دیده می شود (0/05>P). پراکندگی جمعیتی گونه Pseudepidalea viridis viridis تحت تاثیر ایستگاه ها قرار نگرفته است (0/05<P). نتایج اثر ماه های مورد بررسی بر میانگین پراکندگی جمعیتی گونه های ridibunda ridibundaPelophylax و Pseudepidalea viridis viridis نشان داد که تاثیری بر میانگین پراکندگی گونه ها نداشته است (0/05<P). شاخص های اندازه گیری شده بدن نشان داد که آن ها تحت تاثیر معنی دار (0/01>P) ایستگاه ها قرار گرفته اند و این مورد در خصوص اثر ماه بر شاخص اندازه گیری دارای اثر معنی داری می باشد (0/01>P). هم چنین در بررسی اثر جنس بر شاخص های اندازه ای بدن، اندازه ها در جنس ماده بیش تر از نر بوده و در بیش تر پارامترها این اختلاف معنی دار بوده است (0/05>P)هم چنین اثر نوع گونه بر این شاخص ها موثر بوده و اختلاف معنی دار (0/05>P) است.
http://www.aejournal.ir/article_86971_42a497cfe94b6132e7cb5a5778d201a0.pdf
2018-12-22
219
228
دوزیستان
لواسانات
پراکندگی
مورفومتریک
مسرور
ذاکری نسب
m.zakeri_mzn@yahoo.com
1
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحفیفات، تهران، ایران
AUTHOR
سیامک
یوسفی سیاه کلرودی
siamak_yousefi1@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
زهرا
خشنود
zkhoshnood@gmail.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، واحد دزفول، دانشگاه آزاد اسلامی، دزفول، ایران
LEAD_AUTHOR
اومالی، ب.، 2005. آناتومی و فیزیولوژی کلینیکی مهرهداران. ترجمه بانانخجسته، س.م. و ح.، مروتی. 1391. چاپ اول، انتشارات پریور، تبریز. 296 صفحه.
1
بلوچ، م. و کمی، ح.ق.، 1373 .دوزیستان ایران. انتشارات و چاپ دانشگاه تهران. 177 صفحه.
2
پسرکلو، ع.، 1390. مطالعه چندریختی رنگی در قورباغه مردابی Ranaridibunda در استان گلستان. مجله زیست شناسی ایران. جلد 24، شماره 3، صفحات 446 تا 455.
3
حجتی، و.؛ مقدس، د. و فقیری، ا.، 1388. شناسایی دوزیستان و خزندگان پارک ملی شهیدزارع ساری. فصلنامه زیستشناسی جانوری. سال 1، شماره 3، صفحات 31 تا 38.
4
ذاکرینسب، م. و یوسفیسیاهکلرودی، س.، 1393. بررسی فونستیک دوزیستان منطقه لواسانات. مجله آبزیان زینتی. سال 1، شماره 4، صفحات 29 تا 36.
5
علوی، س.؛ کمی، ح.ق. و اخلی، ن.، 1395. مطالعه ریختشناسی و ریختسنجی قورباغه درختی شرقی (Hylaorientalis) در استان مازندران. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 8، شماره 2، صفحات 83 تا 90.
6
محمدیآلوچه،ر.؛ کمی، ح.ق.؛ شجیعی، ه. و داداشی، ع.، 1388.بررسی زیستی دوزیستان رودخانه بالخلو استان اردبیل. فصلنامه زیستشناسی جانوری. سال 2، شماره 1، صفحات 41 تا 49.
7
محمدیان، ح.، 1382. خزندگان و دوزیستان ایران. نشر شبپره. 226 صفحه.
8
نجیبزاده، م.؛ درویش، ج.؛ کمی، ح.ق. و قاسمزاده، ف.، 1393. مقایسه زیستگاه، رفتار جفتگیری و تخمریزی سه گونه از دوزیستان بیدم در استان لرستان. مجله زیست شناسی ایران. جلد 27، شماره 2، صفحات 291 تا 299.
9
هزاوه، ن.؛ قاسمزاده، ف. و درویش، ج.، 1386. بررسی بیوسیستماتیک (مورفولوژی، کاریولوژی و مورفومتری) استان مرکزی. مجله زیست شناسی (Anura) دوزیستان بیدم ایران. جلد 20، شماره 4، صفحات 458 تا 467.
10
Blaustein, A.R. and Wake, D.B., 1990. Declinig Amphibians a global phenomenon? Trend sin Ecology and Evolution. Vol. 5, pp: 203-204.
11
Hassapakis, C., 2012. Amphibian and Reptile conservation. Published in the United States of America.Vol. 5, No. 1, 107 p.
12
Leviton, E. and Anderson, C., 1992. Hand book of middle east Amphibian and Reptils. 223 p.
13
Mark, R.J., 1994. Amphibian and Reptile Species of Special concern in California. Animal management division. 225 p.
14
Nabil, A.; Sarra, F.; Slim, B.; Merella, P. and Khaled, S., 2011. Morphological Variation of the African Green Toad, Bufoboulengeri (Amphibia: Anura) in Tunisia. Pakistan Zoology. Vol. 43, No. 5, pp: 921-926.
15
Oztay, F., 2000. Morphology of Lung of Ranaridibunda with Observations on Changes Occurring Under Different Conditions. Tork zoology. pp: 263-270.
16
Rastegar-Pouyani, N.; Kami, H.G.; Rajabizadeh, M.; Shafiei, S. and Anderson, S.C., 2008.Annotated Checklist of Amphibians and Reptilesof Iran.Iranian Journal of Animal Biosystematic(IJAB). Vol. 4, No. 1, pp: 43- 66.
17
Sparling, W.; Richter, K.; Calhoun, A. and Micacchion, M., 2002. Using Amphibians in Bioassessments of Wetlands.United States Environmental. 41 p.
18
Terentev, P.V. and Chernov, S.A., 1949. Key to Amphibian and Reptiles. (translated from Russian by the Israel program for scientific translation, 1965). Moskva: Translated by L. Kochva. 665 p.
19
Voral-Tok, C., 2000. Morphological characterisation of a population of Ranaridibunda Pallas, 1771 in the Dalaman area, Turkey. Zoology in the Middle East. Vol. 20, No. 1, pp: 47-54.
20
ORIGINAL_ARTICLE
اثر دما بر رشد و بقاء لارو فیل ماهی (Huso huso) از مرحلة تفریخ تا مرحلة جذب کیسة زرده
در مطالعة حاضر، اثر دما بر رشد و بازماندگی لارو فیل ماهی از مرحلة تفریخ تا مرحلة جذب کیسة زرده مورد بررسی قرار گرفت. در این آزمایش تعداد 450 قطعه لارو تازه تفریخ شدة فیل ماهی با وزن اولیة 0/97±20 میلی گرم در قالب 5 تیمار دمایی 10، 15، 18، 21 و 24 درجة سانتی گراد با 3 تکرار آزمایشی برای هر تیمار، به مدت ده روز در تشت های پلاستیکی استوانه ای، با حجم 20 لیتر و دبی ورودی آب دو لیتردر دقیقه انجام شد. نتایج نشان داد هرچه دمای آب بالاتر رود، میزان تلفات نوزادان بیش تر و بازماندگی کم تر می شود. دمای10 درجة سانتی گراد با استفاده از دستگاه سردکنندة چیلر برای همة لاروها در همان دقایق اولیه قابل تحمل نبوده و میزان تلفات آن به 100% رسید. درمیان دیگر گروه های دمایی، بیش ترین تلفات در دمای24 درجة سانتیگراد (1/15±7/33%) و کم ترین تلفات در دمای 15 درجة سانتی گراد (0/32±1%) اتفاق افتاده است. با بالا رفتن دمای آب تا 24 درجة سانتی گراد، زمان جذب کیسة زرده در لاروهای فیل ماهی به طور مشخصی کاهش می یابد. کم ترین میزان رشد لاروها در دمای21 درجة سانتی گراد دیده شد. دمای 18 درجة سانتی گراد به علت تلفات پایین لاروها و حصول وزن بیش تر (0/8±84/00 میلی گرم) نسبت به سایر تیمارها، به عنوان دمای مناسب پرورش لارو فیل ماهی، درنظر گرفته می شود.
http://www.aejournal.ir/article_87238_e30dd490eee06d31361d8632177c6e98.pdf
2018-12-22
229
234
لارو فیل ماهی
دما
رشد
بقاء
کیسة زرده
سیدصمد
هاشمی
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، واحد تنکابن، دانشگاه آزاد اسلامی، تنکابن، ایران
AUTHOR
محمدرضا
قمی
mrghomi@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، واحد تنکابن، دانشگاه آزاد اسلامی، تنکابن، ایران
LEAD_AUTHOR
مهدی
سهراب نژاد
3
سایت خاویاری آبزی گستران ساعی، ساری، ایران
AUTHOR
عبدالباقیان، س.؛ متین فر، ع. و جمیلی، ش.، 1394. اثر دما و غذا بر روی رشد و بازماندگی نوزادان فرشته ماهی (Pterophyllum Scalare). مجله علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 17، شماره 2، صفحات 143 تا 151.
1
فارابی، م. و رمضانی، ح.، 1384. بررسی مراحل رشد لاروی، بچه ماهی نورس و انگشت قد فیلماهی(Huso huso) در تکثیر مصنوعی جهت بازسازی ذخایر. مجلة سیویلیکا، ششمین همایش علوم و فنون دریایی، صفحات 1 تا 12.
2
کردجزی، ض.؛ کمالی، ا.؛ نظری، ر. و یغمایی، ف.، 1382. اثر زمان شروع غذادهی روی رشد و بقاء لارو تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus). مجله علمی شیلات ایران. سال 13، شماره 1، صفحات 115 تا 128.
3
Abdolhay, H., 2004. Sturgeon stock enhancement program in the Caspian Sea with emphasis on Iran, FAO, Italy. pp: 133-170.
4
Bisbal Gustavo, A. and Bengtson, D.A., 1995. Effect of delayet feeding on survival and growth of Summer Flounder (Paralichthys dentatus) larvae. Marine Ecology Progress series. Vol. 121, pp: 301-306.
5
Blaxter, J.H.S., 1992. The effect of temperature on larval fishes. Neth. J. Zool. Vol. 42, pp: 336-357.
6
Bronzi, P.; Rosenthal, H. and Gessner, J., 2011. Global sturgeon aquaculture production: an overview. J Appl Ichthyol. Vol. 27, pp: 169-175.
7
Counihan, T.D.; Miller, A.I.; Mesa, M.G. and Parsley, M.J., 1998. The effects of dissolved gas supersaturation on white sturgeon larvae. Trans. Am. Fish Soc. Vol. 127, pp: 316-322.
8
Dettlaf, T.A.; Ginsburg, A.S. and Schmalhausen, O.L., 1993. Sturgeon fishes. Developmental Biology and Aquaculeure, Springer-Verlag, Berlin. 300 p.
9
Feist, G.; Eenennam, J.; Doroshov, S.; Schreck, C.; Schneider, R. and Fitzpatrck, M., 2004. Early identification of sex in cultured white sturgeon Acipenser transmontanus, using plasma steroid levels. Aquaculture. Vol. 232, pp: 581-594.
10
Finstad, A.G.; Einum, S.; Forseth, T. and Ugedal, O., 2007. Shelter availability affects behaviour, size dependent and mean growth of juvenile Atlantic salmon. Freshw. Biol. Vol. 52, No. 9, pp: 1710-1718.
11
Halver, J.E. and Hardy, R.W., 2002. Fish Nutrition. 3rd Rev Edn. Academic Press Inc. USA. 500 p.
12
Hoar, W.S. and Randall, D.J., 1998. Fiah Physiology. Academic press, INC. London (LTD). 630 p.
13
Kynard, B. and Parker, E., 2005. Ontogenetic behavior and dispersal of Sacramento River white sturgeon, Acipenser transmontanus, with a note on body color. Environ. Biol. Fishes. Vol. 74, No. 1, pp: 19-30.
14
Marcus, A.B.; McAdam, S.O. and Mark, J.S., 2014. The effect of temperature and substrate on the growth, development and survival of larval white sturgeon. Aquaculture. Vol. 430, pp: 139-148.
15
McAdam, S.O., 2011. Effects of substrate condition on habitat use and survival by white sturgeon (Acipenser transmontanus) larvae, and potential implications for recruitment. Can. J. Fish. Aquat. Sci. Vol. 68, pp: 812-821.
16
Richmond, A.M. and Kynard, B., 1995. Ontogenetic behaviour of shortnose sturgeon, Acipenser brevirostrum. Copeia. Vol. 1, pp: 172-182.
17
Rombough, P.J., 1996. The effects of temperature on embryonic and larval development. InGlobal Warming Implications for Freshwater and Marine Fish (Eds.) McDonald, D.G. and Wood, C.M. Cambridge: Cambridge University Press. pp: 177-223.
18
Wang, H.Y.; Weng, C.F.; Tu, M.C. and Lee, S.C., 2001. Synchronization of plasma sexual steroid concentration and gonadal cycles in the sleeper, Eleotris acanthopoma.Zoological Studies. Vol. 40, No. 1, pp: 14-20.
19
Zubair, S.N.; Peake, S.J.; Hare, J.F. and Anderson, W.G., 2012. The effect of temperature and substrate on the development of the Cortisol stress response in the lake sturgeon, Acipenser fulvescens, Rafinesque (1817). Env. Biol. Fish. Vol. 93, pp: 577-587.
20
ORIGINAL_ARTICLE
پاسخهای اولیه و ثانویه تاس ماهی سیبری Brandt, 1869) Acipenser baerii) به استرس دستکاری در دو اندازه مختلف
این مطالعه با هدف بررسی پاسخهای اولیه و ثانویه تاسماهی سیبری (Acipenser baerii) به استرس دستکاری در دو اندازه مختلف انجام گرفت. در این مطالعه ماهیان در دو گروه شامل اندازه کوچک با میانگین وزنی 2/54±627/27 گرم و اندازه بزرگ با میانگین وزنی 5/30±1078/5 گرم در شش تکرار با بیوماس یکسان توزیع شدند. برای بررسی تغییرات فیزیولوژیک خون، شش نمونه خون قبل از استرس و سه نمونه خون در 1، 3، 6، 12 و24 ساعت پس از استرس حاد (ماهیان دو دقیقه در معرض هوا قرار گرفتند) از هر گروه بهطور تصادفی گرفته شد. میزان کورتیزول در هردو اندازه افزایش یافت اما بین ساعت ها اختلاف معنیداری دیده نشد (0/05˃p ). با توجه به نتایج بهدست آمده، گلوکز خون در اندازه بزرگ پس از استرس افزایش یافت و اختلاف معنیدار دیده شد (0/05˂p)، درحالی که اختلاف معنیداری در میزان گلوکز پس از استرس در تیمار اندازه کوچک دیده نشد (0/05˃p). میزان لاکتات در هر دو اندازه پس از استرس افزایش یافت و اختلاف معنیدار نشان داد (0/05˂p). نتایج نشان داد که ماهیان اندازه بزرگ پاسخهای استرسی بیشتری نسبت به اندازه کوچک نشان میدهند بنابراین نسبت به استرس حساس تر حستند.
http://www.aejournal.ir/article_87258_14d0b4418528ed581f42653f0bfe2c15.pdf
2018-12-22
235
242
استرس حاد
اندازه ماهی
کورتیزول
تاس ماهی سیبری
سکینه
ابراهیمی
s.ebrahimi876@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
مجیدرضا
خوش خلق
m.khoshkholgh876@gmail.com
2
گروه علوم دریایی، پژوهشکده حوضه آبی دریای خزر، دانشگاه گیلان، رشت، ایران
LEAD_AUTHOR
بهرام
فلاحتکار
falahatkar@guilan.ac.ir
3
گروه علوم دریایی، پژوهشکده حوضه آبی دریای خزر، دانشگاه گیلان، رشت، ایران
AUTHOR
اخوان، س.؛ اسلاملو، خ. و جمالزاده فلاح، ف.، 1391. اثر استرسهای حاد بر تغییرات کورتیزول، آنتی پروتئاز و پارامترهای خونی ماهیان طلائی (Carassius auratus). توسعه آبزیپروری. شماره 2، صفحات 23 تا 35.
1
حسنعلی پور ، ع.؛ بهمنی، م.؛ یاوری، و.؛ محسنی، م.؛ کاظمی، ر. و پاشازانوسی، ح.، 1392. بررسی تراکمهای مختلف ذخیره سازی بر روی سطوح کورتیزول تاس ماهی سیبری. پژوهشهای جانوری (زیستشناسی ایران). شماره 26، صفحات 154 تا 162.
2
مرشدی، و.؛ کوچنین، پ.؛ بهمنی، م.؛ یزدانی، م.؛ پورعلی، ح. و عشوری، ق.، 1390. تغییرات برخی فاکتورهای خونی در طی دورههای گرسنگی کوتاه مدت در بچه تاس ماهیان سیبری. اقیانوس شناسی. شماره 5، صفحات 59 تا 66.
3
Adams, M., 1990.Status and use of biological indicators for evaluating the effects of stress on fish. American Fisheries Symposium Bethesda. Vol. 8, No. 9, pp: 9-28.
4
Barcellos, G.; Kreutz, C.; Koakoski, G.; Oliveira, A.; da Rosa, S. and Fagundes, M., 2012. Fish age, instead of weight and size, as a determining factor for time course differences in cortisol response to stress. Physiology and Behavior.Vol. 107, No. 3, pp: 397-400.
5
Barton, B.A., 2000. Stress. In: Stickney, R.R. (ed.), EncycLopedia of Aquaculture. John Wiley Sons, New York, USA. pp: 892-898.
6
Barton, B.A., 2002. Stress in fishes: a diversity of responses with particular reference to changes in circulating corticosteriods. Integrative and Comparative Biology. Vol. 42, No. 3, pp: 517-525.
7
Barton, B.A.; Bollig, H.; Hauskins, B.L. and Jansen, C.R., 2000. Juvenile pallid (Scaphirhynchus albus) and hybrid pallid× shovelnose (S. albus × platorynchus) sturgeons exhibit low physiological responses to acute handling and severe confinement. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular and Integrative Physiology. Vol. 126, No. 1, pp: 125-134.
8
Barton, B.A. and Iwama, G.K., 1991. Physiological changes in fish from aquaculture with emphasis on the response and effects of corticosteroids. Annual Review of Fish Diseases. Vol. 1, pp: 3-26.
9
Barton, B.A.; Rahn, A.B.; Feist, G.; Bollig, H. and Schreck, C.B., 1998. Physiological stress responses of the freshwater chondrostean paddlefish (Polyodon spathula) to acute physical disturbances. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 120, No. 2, pp: 355-363.
10
Barton, B.A.; Ribas, L.; Acerete, L. and Tort, L., 2005. Effects of chronic confinement on physiological responses of juvenile gilthead sea bream, Sparus aurata L., to acute handling. Aquaculture Research. Vol. 36, pp: 172–179.
11
Bayunova, L.; Barannikova, I. and Semenkova, T., 2002. Sturgeon stress reactions in aquaculture. Journal of Applied Ichthyology. Vol.18, No. 4-6, pp: 397-404.
12
Belanger, J.M.; Son, J.H.; Laugero, K.D.; Moberg, G.P.; Doroshov, S.I.; Lankford, S.E. and Cech Jr, J.J., 2001. Effects of short-term management stress and ACTH injections on plasma cortisol levels in cultured white sturgeon, Acipenser transmontanus. Aquaculture. Vol. 203, pp: 165-176.
13
Beyea, M.M.; Benfey, T.J. and Kieffer, J.D., 2005. Hematology and stress physiology of juvenile diploid and triploid shortnose sturgeon (Acipenser brevirostrum). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 31, No. 4, 303 p.
14
Conte, F.S., 2004. Stress and the welfare of cultured fish. Applied Animal BehaviourScience. Vol. 86, No. 3, pp: 205-223.
15
Demers, N.E. and Bayne, C.J., 1997. The immediate effects of stress on hormones and plasma lysozyme in rainbow trout. Developmental and Comparative Immunology. Vol. 21, No. 4, pp: 363-373.
16
Di Marco, P.; Priori, A.; Finoia, M.G.; Petochi, T.; Longobardi, A.; Donadelli, V. and Marino, G., 2011. Assessment of blood chemistry reference values for cultured sturgeon hybrids (Acipenser naccarii female × Acipenser baerii male). Journal of Applied Ichthyology. Vol. 27, No. 2, pp: 584-590.
17
Eslamloo, K. and Falahatkar, B., 2014. Variations of some physiological and immunological parameters in siberian sturgeon (Acipenser baerii, Brandt, 1869) subjected to an acute stressor. Journal of Applied Animal Welfare Science. Vol. 17, No. 1, pp: 29-42.
18
Falahatkar, B. and Barton, B.A., 2007. Preliminary observation of physiological response to acute handling and confinement in juvenile beluga Huso huso L. Aquaculture Research. Vol. 38, No. 16, pp: 1786-1789.
19
Falahatkar, B.; Poursaeid, S.; Shakoorian, M. and Barton, B., 2009. Responses to handling and confinement stressors in juvenile great sturgeon Huso huso. Journal of Fish Biology. Vol.75, No. 4, pp: 784-796.
20
Fatira, E.; Papandroulakis, N. and Pavlidis, M., 2014. Diel changes in plasma cortisol and effects of size and stress duration on the cortisol response in European sea bass (Dicentrarchus labrax). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 40, No. 3, pp: 911-919.
21
Fynn-Aikins, K.; Hung, S.S.; Liu, W. and Liu, H., 1992. Growth, lipogenesis and liver composition of juvenile white sturgeon fed different levels of Dglucose. Aquaculture. Vol. 105, No. 1, pp: 61-72.
22
Goolish, M., 1989. The scaling of aerobic and anaerobic muscle power in rainbow trout (Salmo gairdneri). Journal of Experimental Biology. Vol. 147, No. 1, pp: 493-505.
23
Hamlin, H.J.; Edwards, T.M.; Moore, B.C.; Main, K.L. and Guillette, L.J., 2007. Stress and its relation to endocrine function in captive female Siberian sturgeon (Acipenser baeri). Environmental Sciences: An International Journal of Environmental Physiology and Toxicology. Vol. 14, No. 3, pp: 129-139.
24
Haukenes, A.H.; Barton, B.A. and Bollig, H., 2008. Cortisol responses of pallid sturgeon and yellow perch following challenge with lipopolysaccharide. Journal of Fish Biology. Vol. 72, pp: 780-784.
25
Hemre, G.I. and Krogdahl, Å., 1996. Effect of handling and fish size on secondary changes in carbohydrate metabolism in Atlantic salmon, Salmo salar L. Aquaculture Nutrition. Vol. 2, pp: 249-252.
26
Koakoski, G.; Oliveira, A.; da Rosa, S.; Fagundes, M.; Kreutz, C. and Barcellos, G., 2012. Divergent time course of cortisol response to stress in fish of different ages. Physiology and Behavior. Vol. 106, No. 2, pp: 129-132.
27
Kühn, E.R.; Corneillie, S. and Ollevier, F., 1986. Circadian variations in plasma osmolality, electrolytes, glucose, and cortisol in carp (Cyprinus carpio). General and comparative endocrinology. Vol. 61, No. 3, pp: 459-468.
28
Mazeaud, M.; Mazeaud, F. and Donaldson, M., 1977. Primary and secondary effects of stress in fish: some new data with a general review. Transactions of the American Fisheries Society. Vol. 106, No. 3, pp: 201-212.
29
Milligan, C.L., 1996. Metabolic recovery from exhaustive exercise in rainbow trout. Comp Biochem Physiol. Vol. 113, No. 3, pp: 51-60.
30
Pottinger, G. and Carrick, R., 1999. A comparison of plasma glucose and plasma cortisol as selection markers for high and low stress-responsiveness in female rainbow trout. Aquaculture. Vol. 175, No. 3-4, pp: 351-363.
31
Pottinger T.G. and Pickering A.D., 1997. Genetic basis to the stress response: Selective breeding for stress-tolerant fish. In: Iwama, G.K., Pickering, A.D., Sumpter, J.P. and Schreck, C.B. (eds), Fish stress and health in aquaculture. Cambridge University Press, Cambridge. pp: 171-193.
32
Ramsay, M.; Feist, W.; Varga, M.; Westerfield, M.; Kent, L. and Schreck, B., 2009. Whole-body cortisol response of zebrafish to acute net handling stress. Aquaculture. Vol. 297, No.1-4, pp: 157-162.
33
Rottland, J. and Tort, L., 1997. Cortisol and glucose responses after acute stress by net handling in the sparid red oorgy previously subjected to crowding stress. Journal of Fish Biology. Vol. 51, No. 1, pp: 21-28.
34
Schreck, B.; Contreras-Sanchez, W. and Fitzpatrick, S., 2001. Effects of stress on fish reproduction, gamete quality, and progeny. Aquaculture. Vol. 197, No. 1-4,pp: 3-24.
35
Shahsavani, D.; Mohri, M. and Kanani, H., 2010. Determination of normal values of some blood serum enzymes in Acipenser stellatus Pallas. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 36, No. 1, pp: 39-43.
36
Tintos, A.; Míguez, M.; Mancera, M. and Soengas, L., 2006.Development of a microtitre plate indirect ELISA for measuring cortisol in teleosts, and evaluation of stress responses in rainbow troutand gilthead sea bream. Journal of Fish Biology. Vol. 68, No .1, pp: 251-263.
37
Tort, L., 2011. Stress and immune modulation in fish. Developmental and Comparative Immunology. Vol. 35, No. 12, pp: 1366-1375.
38
Webb, M.A.H.; Allert, J.A.; Kappenman, K.M.; Marcos, J.; Feist, G.W.; Schreck, C.B. and Shackleton, C.H., 2007. Identification of plasma glucocorticoids in pallid sturgeon in response to stress. General and Comparative Endocrinology. Vol. 154, No. 1-3, pp: 98-104.
39
Wendelaar Bonga, S.E., 1997. The stress response in fish. Physiological reviews. Vol. 77, pp: 591-625.
40
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی مطلوبیت زیستگاه تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus Borodin, 1897) در آب های حوضه جنوبی دریای خزر با استفاده از تجزیه و تحلیل های چندمتغیره
برای حفاظت از اکوسیستم های آبی و ماهیان، وجود دانش کافی درباره نیازهای زیستگاهی گونه های آبزی اهمیت زیادی دارد. از این رو، این مطالعه با هدف بررسی مطلوبیت زیستگاه تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus Borodin, 1897) درآب های حوضه جنوبی دریای خزر انجام شد. برای این منظور، ارتباط بین مهم ترین فاکتورهای موثر در پراکنش این گونه (بنتوز، دمای آب، شوری، اکسیژن، کل مواد آلی (%TOM)، %Silt-clay و عمق) با میزان صید آن از فروردین 1389 تا اسفند 1394 مورد بررسی قرار گرفت. این مطالعه روی آمار تعداد 3158 عدد تاس ماهی ایرانی به وسیله تور گوشگیر ثابت و تور پره صید شده، متمرکز گردید. فراوانی و تراکم ماکروبنتوزها از طریق نتایج تحقیقات پیشین و نمونه برداری میدانی مورد بررسی قرار گرفت. هم چنین فاکتورهای محیطی نیز از داده های تصاویر ماهوارهای، نمونه برداری میدانی و مطالعات گذشته استخراج شدند. برای بررسی این ارتباط، روش رج بندی آنالیز افزونگی (RDA) با استفاده از نرم افزار CANOCO مورد استفاده قرار گرفت. نتایج نشان داد که فاکتورهای دمای آب، جنس بستر، بنتوز، شوری و %TOM مهم ترین عوامل موثر در پراکنش تاس ماهی ایرانی بودند. ولی فاکتورهای اکسیژن و عمق تاثیر تعیین کنندهای در پراکنش تاس ماهی ایرانی ندارند. دمای مناسب این گونه 25-12 درجه سانتی گراد است. بستر مورد علاقه آن شنی، ماسه ای و گلی بوده و دامنه مناسب شوری ppt 14-11 و کل مواد آلی TOM) 3/3-2/2 %) می باشد. نتایج این مطالعه نشان داد که همبستگی بالایی بین داده های صید تاس ماهی ایرانی و عوامل محیطی و بنتوز وجود دارد. بنابراین، آگاهی از روابط بین فاکتورهای محیطی با داده های صید تاس ماهی ایرانی کمک خواهد کرد تا این یافته ها در مدیریت، برنامه های حفاظتی و جلوگیری از انقراض نسل این گونه به کار گرفته شود.
http://www.aejournal.ir/article_87309_9afa52ac9472bfc3b33dfc509912a29f.pdf
2018-12-22
243
250
مطلوبیت زیستگاه
Acipenser persicus
فاکتورهای محیطی
بنتوز
دریای خزر
امیرعلی
مرادی نسب
moradinasab88@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران، صندوق پستی: 3995
AUTHOR
آرش
اکبرزاده
akbarzadeh@ut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران، صندوق پستی: 3995
LEAD_AUTHOR
محمود
بهمنی
mahmoud_bahmani@ymail.com
3
موسسه تحقیقات بین المللی تاس ماهیان دریای خزر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی ، رشت، ایران
AUTHOR
احسان
کامرانی
eza47@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران، صندوق پستی: 3995
AUTHOR
سارا
حق پرست
sarah_haghparast@yahoo.com
5
گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران
AUTHOR
بهمنی،م.ویوسفی جوردهی،ا.،1390. قابلیت سازگاری لاروهای 20روزه تاسماهی ایرانی (Acipenser persicus) در شوری های مختلف. مجله زیست شناسی ایران. جلد 24، شماره 5، صفحات 669 تا 678.
1
بهمنی، م.؛ توکلی، م.؛ بهروزخوش قلب، م.ر.؛ حلاجیان، ع. و چکمه دوز، ف.، 1392. بررسی تغییرات جمعیت ماهیان خاویاری به منظور بهره برداری بهینه در حوضه جنوبی دریای خزر. موسسه بین المللی تاس ماهیان دریای خزر. 509 صفحه.
2
رستمیان، ن.؛ سعیدپور، ب.؛ ایگدری، س. و رامین، م.، 1395. بررسی مطلوبیت زیستگاهی سگ ماهی خاردار کیوانCobitis keyvani در رودخانه توتکابن (شاخه فرعی رودخانه سفیدرود) با استفاده از مدل جمعی تعمیم یافته (GAM). نشریه پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. دوره 4، شماره 4، صفحات 1 تا 12.
3
رنجبر، ن. و شاهقلیان، ج.، 1392. روش های ارزیابی مطلوبیت زیستگاه. نخستین کنفرانس بین المللی اکولوژی سیمای سرزمین، دانشگاه صنعتی اصفهان. 6 صفحه.
4
زمانی فرادنبه، م.؛ ایگدری، س.ف. و زارعی، ن.، 1394. بررسی شاخص مطلوبیت زیستگاه سیاه ماهی (Capoetagracilis) در رودخانه طالقان. نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 68، شماره 2، صفحات 409 تا 419.
5
سالنامه آماری شیلات ایران. 1394. آمار صید ماهیان خاویاری در سواحل ایرانی دریای خزر. اداره آمار و انفورماتیک دفتر طرح و توسعه، مدیریت روابط عمومی و بین المللی شیلات. تهران. 56 صفحه.
6
ستاری، م.، 1381. ماهیشناسی 1، تشریح و فیزیولوژی ماهی. انتشارات نقش مهر با همکاری دانشگاه گیلان. 658 صفحه.
7
سلیمان رودی، ع.؛ هاشمیان، ع.؛ رئیسیان، ا.؛ نصراله زاده، ح.؛ فارابی، س.م.و.؛ مخلوق، آ.؛ نادری، م.؛ اسلامی، ف.؛ الیاسی، ف.؛ نظران، ف.؛ دشتی، ع.؛ رضایی نصرآبادی، ع.؛ سلمانی، ع. و کاردر رستمی، م.، 1391. بررسی تنوع، پراکنش، فراوانی و زی توده ماکروبنتوزها در منطقه جنوبی دریای خزر. پژوهشکده اکولوژی دریای خزر. 110 صفحه.
8
فدایی، ب.؛ پورکاظمی، م.؛ نظامی، ش.؛ بهمنی، م.؛ نوعی، م.؛ پرندآور، ح.؛ ایمانپور، ج. و جوشیده، ه.، 1378. بررسی احتمال تولیدمثل طبیعی تاس ماهیان حوزه جنوبی دریای خزر در رودخانه سفید رود. مجله علمی شیلات ایران. سال 8، شماره 2، صفحات 69 تا 88.
9
فضلی، ح.؛ فارابی، و.؛ دریانبرد، غ.ر.؛ گنجیان، ع.؛ واحدی، و.؛ واردی، ا.؛ هاشمیان، ع. و روشن طبری، م.، 1389. تجزیه و تحلیل داده های هیدرولوژی و هیدروبیولوژی دریای خزر طی سال های 1370-85. پژوهشکده اکولوژی دریای خزر. 217 صفحه.
10
طباطبائی، س.ن.؛ هاشم زاده سقرلو، ا.؛ ایگدری، س. و زمانی فرادنبه، م.، 1393. عوامل تعیین کننده در زیستگاه انتخابی ماهی Paracobitis iranica ، در رودخانه کردان، حوضه دریاچه نمک. مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 3، شماره 4، صفحات 1 تا 9.
11
طهماسبی، پ.، 1390. رج بندی (تجزیه و تحلیل های چند متغیره در علوم محیطی و منابع طبیعی). انتشارات دانشگاه شهرکرد. 181 صفحه.
12
لالویی، ف.، 1375. بررسی چگونگی مهاجرت ماهیان خاویاری به رودخانه تجن و گرگانرود. مجله علمی شیلات ایران. سال 5، شماره 4، صفحات 17 تا 30.
13
قاسمی پیرکوهی،ش.، 1388. تعیین مناطق حساس شیلاتی گونه تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus) در سواحل جنوبی دریای خزر با استفاده از نرم افزار GIS. پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال. 66 صفحه.
14
نصراله زاده ساروی، ح.؛ فارابی، س.م.و.؛ پورغلام، ر.؛ نادری، م.؛ نجف پور، ش. و پورنگ، ن.، 1391. هیدرولوژی، هیدروبیولوژی و آلاینده های طرح زیست محیطی در منطقه جنوبی دریای خزر. گزارش نهایی طرح تحقیقاتی، پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، 234 صفحه.
15
هاشمیان، ع.؛ سلیمان رودی،ع.؛ سالاروند، غ.؛ الیاسی، ف.؛ نظران، م.؛ دشتی، ع.؛ نورانی، آ.؛ اسلامی، ف.؛ غلامی، م.؛ کاردر رستمی، م. و شعبانی، خ.،1390. بررسی تنوع، پراکنش و فراوانی زی توده ماکروبنتوزها در حوضه جنوبی دریای خزر. پژوهشکده اکولوژی دریای خزر. 78 صفحه.
16
Ahmadi-Nedushan, B.; ST-Hilare, A.; Berube, M.; Robichaud, E. and Thiemonge, N.,2006. A review of statistical methods for the evaluation of aquatic habitat suitability for in stream flow assessment. River Research and Applications, Vol. 22, No. 5, pp: 503-523.
17
Artyukin, E.N., 1983. Differentiation of Persian sturgeon populations and possibilities of its breeding on Volga. In Biological basis of sturgeon culture. Ed. Nauka. pp: 54-61.
18
Beamish, F.W.H.; Sa-ardrit, P. and Tongnunui, S., 2006. Habitat characteristics of the cyprinidae in small rivers in Central Thailand. Environmental Biology of Fish, Vol. 76, pp: 237-253.
19
Birstein, J.A.; Vinogradov, L.G.; Kondakov, N.N.; Kon, M.C.; Astakhova, T.V. and Romanova, N.N., 1968. Atlas Bespozvonochnykh Kaspiiskogo Moria (Moscow: pishchevaia promyshenost). 413 p.
20
Braak, C.J.F. and Smilauer, P., 2002. CANOCO Reference Manual and Cano Draw for Windows User's Guide: Software for Canonical Community Ordination (version 4.5). Microcomputer Power (Ithaca NY, USA). 500 p.
21
Chang, Y.J.; Sun, C.L.; Chen, Y.; Yeh, S.Z.;DiNardo, G. and Su, N.J., 2013. Modelling the impacts of environmental variation on the habitat suitability of swordfish, Xiphias gladius, in the equatorial Atlantic Ocean. ICES Journal of Marine Science, Vol. 70, pp: 1000-1012.
22
Chen, X.J.; Tian, S.; Chen, Y. and Liu, B., 2010. A modeling approach to identify optimal habitat and suitable fishing grounds for neon flying squid (Ommastrephes bartramii) in the Northwest Pacific Ocean. Fisheries Bulletin. Vol. 108, pp: 1-14.
23
Evans, P.G., 2008. Selection criteria for marine protected areas for cetaceans. Proceedings of the workshop European Cetacean Society’s 21st Annual Conference San Sebastian, Spain. 106 p.
24
Froese, R. and Pauly, D., 2017. Fish Base. World Wide Web Electronic Publication. Updated 1 November 2017. Available from: www.fishbase.org.
25
Gibson, L.A.; Wilson, B.A.; Chaill, D.M. and Hill, J., 2004. Modeling habitat suitability of the swamp antechinus (Antechinus minimus maritimus) in the coastal heath lands of southern Victoria, Australia. Biological Conservation. Vol. 117, pp: 143-150.
26
Gosse, M.M.; Power, A.S.; Hyslop, D.E. and Pierce, S.L., 1998. Guidelines for protection of freshwater fish habitat in Newfoundland and Labrador. Fisheries and Oceans. St. John’s, NF.x. 105 p.
27
Haghi Vayghan, A.; Poorbagher, H.; Taheri Shahraiyni, H.; Fazli, H. and Nasrollahzadeh Saravi, H., 2013. Suitability indices and habitat suitability index model of Caspian kutum (Rutilus frisii kutum) in the southern Caspian Sea. Aquatic Ecology. Vol.47, No. 4, pp: 441-451.
28
Holcik, J., 1989. The Freshwater Fishes of Europe: Acipenseriformes. In: Holcik, J. (ed.) General introduction to fishes. Aula-Verlag, Wiesbaden, Germany, 469 p.
29
Holme, N.A. and Mcintyre, A., 1984. Methods for study marine benthos IBP. Hand book. No.16. Second edition. Oxford, 387 p.
30
Kottelat, M. and Freyhof, J., 2007. Handbook of European freshwater fishes. Publications Kottelat, Cornol and Freyhof, Berlin. 646 p.
31
Leps, J. and Smilauer, P., 2014. Multivariate Analysis of Ecological Data. Cambridge university press, 376 p.
32
Lu, C.Y.; Gu, W.; Dai, A.H. and Wei H.Y., 2012. Assessing habitat suitability based on geographic information system (GIS) and fuzzy: A case study of Schisandra sphenanthera Rehd. et Wils. In Qinling Mountains, China. Journal of Ecological Modeling 242. Pg.:105-115. Ranci Ortigosa, G. De Leo, G.A. Gatto, M.2000. VVF: integrating modeling and GIS in a software tool for habitat suitability assessment. Environmental Modeling & Software 15 p.
33
Marini, L.; Scotton, M.; Sebastian, K. and Angelo, P., 2007. Effects of local factors on plant species richness and composition of Alpine meadows. Agriculture, Ecosystems & Environment. Vol. 119, pp: 281-288.
34
NASA Homepage, 2007. MODIS design concept. http://oceancolor.gsfc.nasa.gov/
35
Navinder, J.; Singh, G. and Yoccoz, L., 2009. Using habitat suitability models to sample rare species in high-altitude ecosystems: a case study with Tibetan argali. Biodiversity and Conservation. Vol. 18, pp: 2893-2908.
36
Ouyang, N.L.; Lu, S.L.; Wu, B.F.; Zhu, J.J. and Wang, H., 2011. Wetland Restoration Suitability Evaluation at the Watershed Scale- A Case Study in Upstream of the Yongdinghe River. 3rd International Conference on Environmental science & information application technology.
37
Rosenfeld, J., 2003. Assessing the habitat requirement of stream fishes: An overview and evaluation of different approaches. Transaction of the American Fisheries Society. Vol.132, pp: 953-968.
38
Vecsei, P. and Artyukhin, E., 2001. Threatened fishes of the world: Acipenser persicus Borodin, 1897 (Acipenseridae). Environmental Biology of Fishes. Vol. 61, No. 2, pp:160.
39
Vinagre, C.; Fonseca, V.; Cabral, H. and Costa, M.J. 2006. Habitat suitability index models for the juvenile soles, Solea solea and Solea senegalensis, in the Tagus estuary: Defining variables for species management. Fisheries Research. Vol.82, pp: 140-149.
40
Vincenzi, S.; Caramori, G.; Rossi, R. and De Leo, G.A., 2007. A comparative analysis of three habitat suitability models for commercial yield estimation of Tapes philippinarum in a North Adriatic coastal lagoon (Sacca di Goro, Italy). Marine Pollution Bulletin. Vol.55, pp: 579-590.
41
Wootton, R.J., 1992. Fish ecology. Blackie, Glasgow & amp; London. 212 p.
42
Zeigenfuss, L.C.; Singer, F.J. and Gudorf, M.A., 2000. Test of a modified habitat suitability model for bighorn sheep. Restoration Ecology. Vol. 8, pp: 38-46.
43
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی میزان زنده مانی تاثیر تغذیه لارو ماهی آزاد خزر (caspius Salmo trutta) با سیست کپسول زدایی شده آرتمیا اورمیانا (Artemia urmiana)
این پژوهش به بررسی تاثیر جایگزینی سیست دکپسوله آرتمیا ارومیانا (Artemia urmiana) در خوراک مرحله لارو ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspius) بر شاخص زنده مانی آن پرداخته است. تحقیق حاضر در قالب طرح کامل تصادفی (CRD) با 4 گروه آزمون غذایی شامل : تیمار 1 ( جیره شاهد غذای فرموله تجاری)، تیمار 2 (جیره با 25درصد سیست پوسته زدایی شده آرتمیا و75 درصد خوراک کنسانتره)، تیمار 3 (جیره با 50 درصد سیست پوسته زدایی شده آرتمیا و50 درصد خوراک کنسانتره)، تیمار 4 (جیره با 75 درصد سیست پوسته زدایی شده آرتمیا و 25 درصد خوراک کنسانتره) تا وزن 1 گرمی انجام گرفت. این آزمایش در تراف های 4 گانه که با توری فلزی چشمه ریز به 3 قسمت مساوی تقسیم شده و تعداد 300 قطعه لارو در هر قسمت با 2 تکرار و کل تراف 900 لارو انجام گرفت. لاروهای تهیه شده از مرکز تکثیر کلاردشت در ابتدا به دقت توزین و میانگین وزنی و زیتوده در هر تیمار مشخص گردید. وزن اولیه لاروها به ترتیب 25±120 میلی گرم بود. در طول دوره آزمایش درصد زنده مانی (SR) محاسبه شد. مقایسه میانگین (انحراف از معیار±) درصد زنده مانی گروه های آزمون نشان داد که تیمار 2 با 0/19±98/41 درصد بالاترین و تیمار 1 با 1/21±86/83 درصد پایین ترین زنده مانی را داشت. مقایسه این شاخص در تیمارهای 2 تا 4 اختلاف معنی داری با یکدیگر نداشتند (0/05<p) ولی در مقایسه با تیمار 1 اختلاف معنی داری مشاهده گردید (0/05>p). با توجه به اطلاعات به دست آمده از این تحقیق می توان نتیجه گرفت که تغذیه با سیست کپسول زدایی شده آرتمیا اورمیانا به طور معنی داری در کاهش تلفات مرحله لارو ماهی آزاد خزر موثر است.
http://www.aejournal.ir/article_87310_855d504901eaa2a1d0abb9cd7bd387b2.pdf
2018-12-22
251
256
بقاء
تخم
تلفات
دریای خزر
دکپسوله
آلوین
آرتمیا
علی
نکوئی فرد
nekoueifard@areeo.ac.ir
1
مرکز تحقیقات آرتمیای کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ارومیه، ایران
LEAD_AUTHOR
شهرام
دادگر
shdadgar@yahoo.com
2
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
محمود
حافظیه
jhafezieh@yahoo.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
رضا
نهاوندی
rezanahavandi91@gmail.com
4
موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
AUTHOR
آذری تاکامی، ق.، 1383. اهمیت پژوهش های علمی- کاربردی در تغذیه آبزیان پرورشی ایران. مجموعه مقالات اولین کنگره علوم دامی و آبزیان کشور. صفحات 464 تا 466.
1
آق، ن. و یحیی زاده، م.، 1375. آرتمیا اورمیانا سیکل زندگی و ارزش غذایی. انتشارات موسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران. 95 صفحه.
2
آق، ن.، 1378. تولید انبوه آرتمیا در آزمایشگاه. گزارش نهایی طرح پژوهشی، معاونت پژوهشی دانشگاه ارومیه. 88 صفحه.
3
آق. ن. و حسینی قطره، س.ح.، 1381. بررسی میزان پروتئین، چربی و پروفایل اسیدهای چرب آرتمیای دریاچه ارومیه در مراحل مختلف رشد. پژوهش سازندگی. شماره 54، صفحات 85 تا 89.
4
بهرامیان، ب.، 1377. تعیین اندازه طول و وزن بچه ماهی آزاد دریای خزر مناسب برای رهاسازی در رودخانه های مساعد (Smolt). موسسه تحقیقات شیلات ایران، معاونت تکثیر و پرورش آبزیان شیلات ایران.
5
شفرد، ج. و بروپیچ، ن.، 1991. پرورش تراکم ماهی (ترجمه : تاری، م.، معتمد، م) انتشارات دانشگاه گیلان. صفحات 87 تا 88.
6
طیبی، ن.، 1382. بررسی اثرات دما و زمان برداشت بر قابلیت تخم گشایی و ارزش غذایی آرتمیا ارومیه (Artemia urmiana). پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات، دانشگاه تربیت مدرس تهران. 62 صفحه.
7
عباسی، ک.؛ ولی پور، ع.؛ طالبی حقیقی، د.؛ سرپناه، ع. و نظامی، ش.، 1378. اطلس ماهیان ایران آب های داخلی گیلان. مرکز تحقیقات شیلات گیلان، بندر انزلی. 113 صفحه.
8
کلنگی میاندره، ح.، 1383. بررسی رشد و بازماندگی لارو قزل آلای رنگین کمان تغذیه شده با غذای کنسانتره و آرتمیا. مجموعه مقالات نخستین همایش ملی شیلات و توسعه پایدار، دانشگاه آزاد اسلامی قائم شهر. 134 صفحه.
9
لیت ریس، ا.، 1374. راهنمای تکثیر و پرورش ماهیان قزل آلا و ماهی آزاد. ترجمه عمادی، ح.، چاپ چهارم، انتشارات ماهنامه آبزیان. 212 صفحه.
10
مشکینی، س. و سیدسجادی، پ.،1386 .ارزیابی اثرات ضد استرسی سیست دکپسوله و ناپلی آرتمیا اورمیانا در لاروهای قزل آلای رنگین کمان. پنجمین گردهمایی دامپزشکان علوم بالینی ایران. اهواز.
11
نجدگرامی، ا.، 1386. بررسى تأثیر تغذیه اولیه بر رشد لارو نورس قزل آلاى رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). نشریه تربیت معلم.
12
نکوئی فرد، ع.، 1380. ارائه فرمولاسیون استفاده از سیست دکپسوله آرتمیا ارومیانا در لاروهای تازه به تغذیه افتاده قزل آلای رنگین کمان پرورشی. اولین همایش دریاچه ارومیه، ارومیه، ایران.
13
هاشمی، ش.، 1377. ارزیابی سیست آرتمیای دریاچه ارومیه و بررسی روش های بالا بری درصد تخم گشایی. پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات، دانشگاه تربیت مدرس. 53 صفحه.
14
یاراحمدی، ب.؛ مقدسی، ف. و سیاوشی، ر.، 1385. استفاده از سیست پوسته زدایی شده آرتمیا در تغذیه لارو قزل آلای رنگین کمان. پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. شماره 37، صفحات 49 تا 58.
15
یاراحمدی، ب.، 1383. بررسی استفاده از سیست پوسته زدایی شده آرتمیا بر میزان رشد، بقا و سایر شاخص های رشد در تغذیه لارو قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). فصلنامه پژوهش و سازندگی. شماره 73، صفحات 118 تا 125.
16
Azari Takami, G., 1987. The use of Artemia from Urmia Lake (Iran) as food for sturgeon. Artemia research and its application, Ecology, Culturing, Use in aquaculture. Vol. 3, pp: 467-468.
17
Başçınar, N.S. and Başçınar, N., 2008. Karadeniz alabaligi (Salmotrutta labrax Pallas, 1811) larval arinda Artemia vetozyemkullani miuzerinik asila stirmali biraristirma. Journal of Fisheries Sciences. Vol. 2, No. 3, pp: 447-456.
18
Gilbert Hernandez, R., 2001. Artemia bio encapsolation. Effect of particles sized on the filtering behavior of Artemia franciscana. J. crustacean Biol. Vol. 21, pp: 435-442.
19
Hardy, R.W., 2002. Nutrient requirements and feeding of finish for aquaculture Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss). CABI Publishing, Wallingford, Oxon, United Kingdom. Vol. 1, pp: 184-202.
20
Kiabi, B.H.; Abdoli, A. and Naderi, M., 1999. Status of fish fauna in south Caspian Basin of Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 18, pp: 57-65.
21
Korkut, A.Y. and Altan, Ö., 2002. Deniz Balıkları Yetiştiriciliğinde Larval Beslemenin Yerive Önemli Kriterler, E.Ü. Su ürünleri Dergisi. Vol. 19, No. 1-2, pp: 267-270.
22
Leger, P.; Sorgeloos, P.; Millamena, O.M. and Simpson, K.L., 1985. International study on Artemia: XXV. Factors determining the nutritional effectiveness of Artemia: the relative impact of chlorinated hydrocarbons and essential fatty acids in San Francisco and sanpablo Artemia. J. EXP. Mar. Ecol. Vol. 93, pp: 71-82.
23
Leger. P., 1986. The use and nutritional value of Artemia as food source. Occagr. Mar. Biol. Ann. Rev. Vol. 24, pp: 521-623.
24
Lger, P.; Bengtson, D.A.; Sorgeloos, P.; Simpson, K.L. and Beck, A.D., 1987. The Nutritional Value of Artemia: a review. In: sorgeloos, P., Bengtson, D.A., Decleir, W. Jaspers, E. (Eds). Artemia research and its application. Ecology, culturing, use in Aquaculture. Universal press, Wetteren. Vol. 3, pp: 357-372.
25
Liebaritz, H.E.; Bengtson, D.A.; Maugle, P.D. and Simpson, K.L., 1987. Effect of Artemia lipid fraction on growth and survival of larval inland silversides. In: sorgeloos, P., Bengtson, D.A., Delleir, W, Jasper, E. (Eds). Artemia research and its application Ecology, culturing, use in aquaculture. Universal press, Wetteren. Vol. 3, pp: 469-479.
26
Lim, L.C.; Cho, Y.L.; Dhert, P.; Wong, C.C.; Nelis, H. and Sorgeloos, P., 2002. Use of decapsulated Artemia cysts in ornamental fish culture. Aquaculture Research. Vol. 33, No. 8, pp: 575-589.
27
Paul, A. and Megilitsch, R., 1991. Invertebrate Zoology Third Edition. New Yourk Oxford University Press.
28
Sorgeloos, P., 1980. The use of brie shrimp Artemia in aquaculture, in: Persoone, G., Sorgeloos, P., Roeds, O. Jasper, E. (Eds). The brine shrimp Artemia. Ecology, culturing, use in Aquaculture. Universal Press, Wetteren. Vol. 3, pp: 25-46.
29
Van stappen, G., 1996. Artemia. In: Manual on the production and use of live food for aquaculture, Eds, Pand. Sorgeloos, P., FAO publications. pp: 101-318.
30
ORIGINAL_ARTICLE
اثر 731 miR بر روی آسیب های چشمی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Onchorhynchus mykiss) در ابتلای به بیماری سپتی سمی خونریزی دهنده ویروسی
در میان بیماری های مختلف ویروسی در ماهی، ویروس (VHSV) به عنوان مهم ترین عفونت ویروسی در ماهی قزل آلا شناخته شده است. در بررسی حاضر، تأثیر miR-731 بر روی آسیب دیدگی چشم یا اگزوفتالمی در ماهی قزل آلای رنگین کمان (Onchorhynchus mykiss) بررسی شده است. در این آزمایش ، ماهی های (1 ± 20) گرم برای تعیین احتمال پیشگیری بیماری VHS با miRNA در چهار گروه اصلی و سه تکرار، شاهد منفی بدون تزریق، فیزیولوژی با تزریق سالین، شاهد مثبت با تزریق VHSV و گروه آزمایشی با تزریق miRNA و سپس تزریق ویروس تقسیم بندی شدند. فعالیت کربنیک آنهیدراز (CA) نقش مهمی در کنترل و تنظیم فشار داخل چشم دارد که مقدار آن در گروه ها بررسی شد. نتایج نشان داد که تمام حیوانات در کنترل مثبت دچار اگزوفتالمی شدند، در گروه شاهد منفی، گروه فیزیولوژی و گروه آزمایشی اثری از اگزوفتالمی مشاهده نشد و تفاوت معنی داری بین میزان آنزیم کربنیک آنهیدراز در گروه شاهد مثبت با سایر گروه ها وجود داشت ( P<0.05). مطالعات بیش تری برای تایید مکانیسم دقیق مهار ویروس توسط miRNA مورد نیاز است، اما نتایج حاضر تا حدی نشان دهنده کاهش علائم بیماری در چشم توسط miRNA در ماهی قزل آلای رنگین کمان در مقابل عفونت VHSV است.
http://www.aejournal.ir/article_80852_409ec6dc9e2907a0d6a55b7aa3e0604d.pdf
2018-12-22
257
262
سپتی سمی هموراژیک ویروسی
اگزوفتالمی
کربنیک آنهیدراز
miRNA
نوشین
زمان نژاد
zamannejadnooshin@gmail.com
1
گروه علوم و زیست فناوری جانوری، دانشکده علوم و فن آوری زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
AUTHOR
محمدرضا
بیگدلی
bigdelimohammadreza@yahoo.com
2
گروه علوم و زیست فناوری جانوری، دانشکده علوم و فن آوری زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
عباسعلی
مطلبی
motalebi@ifro.ir
3
گروه علوم پایه و بهداشت، دانشکده علوم تخصصی دامپزشکی، واحد علوم تحقیقات تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، ایران
AUTHOR
حمید
کهرام
4
گروه فیزیولوژی، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
عادل
حقیقی خیابانیان اصل
5
گروه پاتولوژی، دانشکده علوم تخصصی دامپزشکی، واحد علوم تحقیقات تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، ایران
AUTHOR
Baird, T. T. Jr.; Waheed, T.;. Okuyama, T.; Sly, W. S. and Fierke, C. A., 1997. Catalysis and inhibition of human carbonic anhydrase IV. Biochemistry, 36:2669–2678
1
Bela-Ong, D. B., 2014. Rhabdovirus-induced micro ribonucleic acids in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum). PhD Thesis, National Veterinary Institute, Technical University of Denmark, Denmark.
2
Beydemir, S.; Bulbul, M.; Hisar, O.; Soyut, H. and Yanik, T., 2006. Carbonic anhydrase: affinity purification and kinetic properties from rainbow trout lens. International Journal of Applied Chemistry, 2:45–55.
3
Cornwell, E.R.,; Eckerlin, G.E.; Getchell, R.G; Groocock, G.H.; Thompson, T.M.; Batts, W.N.; Casey, R.N.; Kurath, G.; Winton, J.R.; Bowser, P.R. and Bain, M.B., 2011. Detection of viral hemorrhagic septicemia virus by quantitative reverse transcription polymerase chain reaction from two fish species at two sites in Lake Superior, Journal of aquatic animal health. pp: 207-217.
4
Fields, B. N., et al., 1996. Fundamental virology, Lippincott-Raven Philadelphia,ePA PA.
5
Gültepe, N., Ateş, O., Hisar, O. and Beydemir, Ş., 2011. Carbonic Anhydrase Activities from the Rainbow Trout Lens Correspond to the Development of Acute Gas Bubble Disease, Journal of Aquatic Animal Health, pp:. 134-139.
6
Henry, R. P.; Gilmour, K. M.; Wood, C. M. and Perry, S. F., 2000. Extracellular carbonic anhydrase activity and carbonic anhydrase inhibitors in the circulatory system of fish. Physiological Zoology. 70:650–659.
7
Hisar, O.; Aras Hisar, S.; Sirkecioglu, A. N.; Karatas, M. and Yanik, T., 2007. Using an oxygenating and degassing column to improve water quality in salmonid hatcheries. International Journal of Natural and Engineering Sciences. 1:63–64.
8
Huang, C.X.; Chen, N.; Wu, X.J.; Huang, C.H.; He, Y.; Tang, R.; Wang, W.M. and Wang, H.L., 2015. The zebrafish miR-462/miR-731 cluster is induced under hypoxic stressvia hypoxia-inducible factor 1a and functions in cellular adaptations, The FASEB Journal article fj.14- Published online August 11. Pp: 4901-4913
9
Kİrkan, S., U. Parİn and O. Dolgun., 2018. "Identification of Lactococcus garvieae by PCR from rainbow trout and investigation of susceptibility to antibiotics." International Journal of Veterinary Science 7(1): 28-32
10
Lee, R. C., 1993. The C. Elegans heterochronic gene line 4 encodes small RNAs with antisense Complementarity to Lin 14 cell, 75: 5, 843-54.
11
Lin, S.L. and Ying, S.Y., 2006. Gene silencing invitro and invivo using intronic microRNAs. In MicroRNA Protocols. Pp: 295-312
12
Lionetto, M.G.; Giordano, M.E.; Vilella, S. and Schettino, T., 2000. Inhibition of eel enzymatic activities by Cd, Aquatic Toxicology, pp: 561–571.
13
Mitro, M.G. and White, A. L., 2008. Viral hemorrhagic septicemia and freshwater fisheries: the State of the Science. Department of Natural Resources.
14
Maren, T. H. and Frederick. A., 1958. Carbonic anhydrase inhibition in the elasmobranch. Federation Proceedings. 17:391.
15
Nudelman, A.S.; DiRocco, D.P.; Lambert, T.J.; Garelick, M.G.; Le, J.; Nathanson, N.M. and Storm, D.R., 2010, "Neuronal activity rapidly induces transcription of the CREB‐ regulated microRNA‐132, in vivo." Hippocampus, pp: 492-498.
16
OIE/ office International de Epizooties., 2006. International aquatic animal Health Code. Fish, mollusks and crustaceans. Fifth edition. Page: 469 notifiable disease chapter 2.1.5. pp: 141-158.
17
Pedersen, D. B.; Stefansson, E.; Kiilgaard, J. F.; Jensen, P. k.; Eysteinsson, T.; Bang, K. and Cour, M. L., 2006. Optic nerve pH and PO2: the effects of carbonic anhydrase inhibition, and metabolic and respiratory acidosis. Acta Ophthalmologica Scandinavica. 84:475–480.
18
Sandlund, N.; Gjerset, B.; Bergh, Ø.; Modahl, I.; Olesen, N. J.; Johansen, R., 2014. Screening for Viral Hemorrhagic Septicemia Virus in Marine Fish along the Norwegian Coastal Line. Plos One ,e108529. 9(9):1-12.
19
Sharifnia, Z. and Kazemi, B., 2008. Diagnosis of viral haemorrhagic septicaemia (VHS) in Iranian rainbow trout aquaculture by pathology and molecular techniques. Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 28(5), p.170.
20
Shrimpton, J. M.; Randall, D. J. and Fidler, L. E., 1990. Factors affecting swim bladder volume in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) held in gas supersaturated water. Canadian Journal of Zoology. 68:962–968.
21
Supuran, C. T. and Scozzafava, A., 2002. Applications of carbonic anhydrase inhibitors and activators in therapy. Expert Opinion on Therapeutic Patents. 12:217–242.
22
van Rooij, E., 2012. MicroRNA therapeutics for cardiovascular disease: opportunities and obstacles. Nat. Rev. Drug Discovery. pp: 860–872.
23
Francki, R.I.B.; Fauquet, C.M.; Knudson, D.L. and Brown, F. eds., 2012. Classification and Nomenclature of Viruses: Fifth Report of the International Committee on Taxonomy of Viruses. Virology Division of the International Union of Microbiological Societies (Vol. 2). Springer Science & Business Media.
24
Zamannejad, N; Bigdeli, M. R; Motallebi, A; Kohram, H and Haghighi Kh A, A., 2018. The pretreatment potential effects of miR-731 in impaired brain tissue of rainbow trout Oncorhynchus mykiss infected with viral hemorrhagic septicemia virus, Iranian Journal of Fisheries Sciences.
25
Zhang, B.C.; Zhou, Z.J. and Sun, L.; 2016. pol-miR-731, a teleost miRNA upregulated by megalocytivirus, negatively regulates virus-induced type I interferon response, apoptosis, and cell cycle arrest. Scientific reports. 6:28354. Doi: 10.1038/srep283.
26
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر سطوح مختلف روغن ماهی و روغن کانولا در جیره غذایی بر رشد، بازماندگی و ترکیب شیمیایی بدن ماهی قزل آلای رنگین کمان (Onchorhynchus mykiss) پرواری
اثر روغنهای دریایی بهدلیل دارا بودن اسیدهای چرب n-3 روی بسیاری از بیماریها به اثبات رسیده است. اکثر اثرات بالینی اسیدهای چرب n-3 بهدلیل وجود دوکوزاهگزانوئیک اسید و ایکوزاپنتانوئیک اسید میباشد که تاکنون جزء در ماهی در هیچ ماده غذایی دیگری یافت نشده است. هدف از این تحقیق بررسی تأثیر سطوح مختلف روغن ماهی و روغن کانولا در جیره غذایی بر رشد، بازماندگی و ترکیب شیمیایی بدن ماهی قزلآلای رنگینکمان پرواری میباشد که در نهایت میتواند موجب جبران کمبود اسیدهای چرب n-3 در سبد غذایی خانوار شده و گامی مهم در راستای سلامت جامعه باشد. برای این منظور سه جیره آزمایشی با سطح پروتئین یکسان (40%) و سطوح چربی مختلف (جیره اول با 10% روغن ماهی، جیره دوم با 10% روغن کانولا و جیره سوم با 5% روغن ماهی و 5% روغن کانولا) و هر یک با سه تکرار تهیه شد و 270 عدد ماهی قزلآلای رنگینکمان با میانگین وزن 10±100 گرم با تراکم 30 عدد در هر قفس بهمدت 56 روز پرورش یافتند. براساس نتایج بهدست آمده شاخصهای میانگین وزن نهایی، افزایش وزن بدن، ضریب تبدیل غذایی، نرخ رشد ویژه و فاکتور وضعیت در هر سه تیمار دارای اختلاف معنیداری بود (0/05>P) اما اختلاف معنیداری از نظر نرخ بقا و ترکیب شیمیایی بدن بین تیمارهای مختلف مشاهده نشد (0/05<P). بهطورکلی نتایج نشان داد تیمار سوم یعنی ترکیب 5% روغن ماهی و 5% روغن کانولا در جیره سبب بهبود شاخصهای رشد، درصد بازماندگی و فاکتور وضعیت گردید (0/05>P).
http://www.aejournal.ir/article_87040_625a5ccec363165f6db7dadaeaa4461e.pdf
2018-12-22
263
268
روغن ماهی
روغن کانولا
رشد
بازماندگی
ترکیب شیمیایی بدن
قزل آلای رنگین کمان
کیومرث
علی رمجی
ali_ramaji@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، واحد تنکابن، دانشگاه آزاد اسلامی، تنکابن، ایران
AUTHOR
سیما
برزگر
mahmodi@roghaye@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، واحد تنکابن، دانشگاه آزاد اسلامی، تنکابن، ایران
AUTHOR
مهدی
محمد علیخانی
r_mahmodi@gmail.com
3
باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد علوم تحقیقات تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
سلطنت
نجار لشگری
se_lashgari@yahoo.com
4
مرکز تحقیقات ماهیان سردآبی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تنکابن، ایران
LEAD_AUTHOR
رقیه
محمودی
roghaye.mahmodi@gmail.com
5
مرکز تحقیقات ژنتیک و اصلاح نژاد ماهیان سردآبی شهید مطهری یاسوج، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، یاسوج، ایران
AUTHOR
بادپارودسری، ا.؛ توکل، س.؛ قمی، م.ر. و فغانیلنگرودی، ح.، 1392. تأثیر سطوح مختلف روغن ماهی و روغن سویا در جیره غذایی بر شاخصهای رشد، تغذیه و آنالیز لاشه ماهی قزلآلای رنگینکمان انگشت قد (Oncorhynchus mykiss). مجله شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی واحد آزادشهر. سال 7، شماره 3، صفحات 51 تا 56.
1
جرجانی، س.؛ قلیچی، ا. و بغدادی، آ.، 1393. اثرهای جایگزینی کامل روغن ماهی با روغنهای گیاهی بر پارامترهای رشد، کارایی غذا و پروفایل اسیدهای چرب عضله ماهیان قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss). نشریه توسعه آبزیپروری. سال 8، شماره 3، صفحات 13 تا 30.
2
جلیلی، ر.؛ آق، ن.؛ نوری، ف. و ایمانی ، ا.، 1392. آثار جایگزینی پودر و روغن ماهی با منابع گیاهی در جیره غذایی ماهی قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss). نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 66 ، شماره 2، صفحات 120 تا 131.
3
دلاوریان، ر.؛ آبرومند، ع.؛ ضیائینژاد، س. و جواهریبابلی، م.، 1393. اثرهای جایگزینی روغن ماهی جیره غذایی با روغنهای گیاهی (روغن سویا و خرما) بر شاخصهای رشد، تغذیه و بقاء در کپور معمولی (Cyprinus carpio). نشریه توسعه آبزیپروری. سال 8، شماره 3، صفحات 43 تا 51.
4
قلیچی، ا. و ناصریخلخالی، ا.، 1393. اثرات جایگزینی سطوح مختلف روغن گیاهی کانولا با روغن ماهی در جیره غذایی بر فاکتورهای ایمنی و آنزیمی ماهی قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss). فصلنامه محیطزیست جانوری. سال 6، شماره 2، صفحات 17 تا 27.
5
مسیحا، ع.؛ ابراهیمی، ع.؛ محبوبیصوفیانی، ن. و. کریمی، م.ر.، 1389. اثر جایگزینی روغن ماهی با روغن بذرک در جیره قزل آلای رنگینکمان (Oncorhynchusmykiss) انگشت قد روی عملکرد رشد و ترکیب لاشه بچهماهیان. مجموعه مقالات اولین همایش ملی علوم آبزیان. دانشگاه آزاد اسلامی واحد بوشهر. 19 صفحه.
6
محمدیآشنانی، م.؛ نفیسیبهابادی، م.؛ موحد، ع.؛ حسنی، آ. و محمدی، م.، 1386. اثر جایگزینی سطوح مختلف روغن بذرک با روغن ماهی در جیره غذایی ماهی قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss) جهت افزایش اسیدهای چرب 3-n در بافت مأکول. فصلنامه طب جنوب، پژوهشکده زیست- پزشکی خلیج فارس، مرکز تحقیقات طب گرمسیری و عفونی خلیجفارس، دانشگاه علوم پزشکی و خدمات بهداشتی درمانی بوشهر. سال 10، شماره 2، صفحات 128 تا 135.
7
نیکزادحسنکیاده، م.؛ خارا، ح.؛ یزدانی، م. و پرندآور، ح.، 1387. اثرات منابع چربی جیره غذایی بر فاکتورهای رشد، تغذیه و ترکیب اسیدهای چرب لاشه بچه فیلماهیان پرورشی (Huso huso). مجله علوم زیستی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان. سال 2، شماره 4، صفحات 73 تا 87.
8
Abedian Kenari, A.; Mozanzadeh, M.T. andPourgholam, R., 2010. Effects of total fish oil replacement to vegetable oils at two dietary lipid levels on the growth, body composition, haemato-immunological and serum biochemical parameters in Caspian brown trout (Salmo trutta caspius). Aquaculture Research. Vol. 42, pp: 1131-1144.
9
AOAC. 1990. Official methods of analysis of the Association Official Analytical Chemists, 15th edn. Association of official Analytical Chemists, Washington, DC, USA.
10
Arsalan, M.; Sirkecioglu, N.; Bayir, A.; Arslan, H. and Aras, M., 2012. The Influence of Substitution of Dietary Fish Oil with Different Vegetable Oils on Performance and Fatty Acid Composition of Brown Trout, Salmo trutta. Turkish J of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 12, pp: 575-583.
11
Bell, J.G. and Sargent, J.R., 2003. Arachidonic acid in aquaculture feeds: current status and future opportunities. Aquaculture. Vol. 218, pp: 491-499.
12
Drew, M.D.; Ogunkoya, A.E.; Janz, D.M. and Van Kessel, A.G., 2007. Dietary influence of replacing fish meal and oil with canola protein concentrate and vegetable oils on growth performance, fatty acid composition and organochlorine residues in rainbow trout. Aquaculture. Vol. 267, pp: 260- 268.
13
Gordon Bell, J.; Mcevoy, J.; Tocher, DR.; Mcghee, F.; Campell, P.J. and Sargent, J.R., 2001. Replacement of fish oil with rapeseed oil in diets of atlantic salmon (salmo salar) affects tissue lipid composition and hepatocyte fatty acid metabolism. Journal of Nutrition. Vol. 13, pp: 1535-1543.
14
Grisdale-Helland, B.; Shearer, K.D.; Gatlin III, D.M. and Helland, S.J., 2008. Effects of dietary protein and lipid levels on growth, protein digestibility, feed utilization and body composition of Atlantic cod (Gadus morhua). Aquaculture. Vol. 283, pp: 156-162.
15
Guler, M. and Yildiz, M., 2011. Effects of dietary fish oil replacement by cottonseed oil on growth performance and fatty acid composition of rainbow trout. Turkish Journal of Veterinary & Animal Sciences. Vol. 35, No. 3, pp: 157-167.
16
Higgs, D.A.; Dosanjh, B.S.; Prendergast, A.F.; Beames, R.M.; Hardy, R.W.; Riley, W. and Deacon, G., 1995. Use of rapeseed/canola protein products in finfish diets. In: Nutrition and Utilization Technology in Aquaculture, (AOCS Press, Champaign, IL. pp: 130-156.
17
IFFO. 2008. International Fish Meal and Fish Oil Organisation Statistical Yearbook.
18
Mourente, G. and Bell, J.G., 2006. Partial replacement of dietary fish oil with blends of vegetable oils (rapeseed, linseed and palm oils) in diets for European sea bass over a long term growth study: Requirement criteria for essential fatty acids. J of applied Ichthyology. Vol. 11, pp: 183-198.
19
Mwachireya, S.A.; Beames, R.M.; Higgs, D.A. and Dosanjh, B.S., 1999. Digestibility of canola protein products derived from the physical, enzymatic and chemical processing of commercial canola meal in rainbow trout held in fresh water. Aquaculture Nutrition. Vol. 5, pp: 73-82.
20
Naylor, R.L.; Goldburg, R.J.; Primavera, J.H.; Kautsky, N.; Beveridge, M.C.M.; Clay, J.; Folke, C.; Lubchenco, J.; Mooney, H. and Troell, M., 2000. Effect of aquaculture on world fish supplies. Nature. Vol. 405, pp: 1017-1024.
21
Regost, C.; Jakobsen, J.V. and Rora, A.M.B., 2004. Flesh quality of raw and smoked fillets of Atlantic salmon as influenced by dietary oil sources and frozen storage. Food Research International. Vol. 37, No. 3, pp: 259-271.
22
Sargent, J.R.; Bell, J.G.; Bell, M.V.; Hendersson, R.J. and Tocher, D.R., 1995. Requirement criteria for essential fatty acids. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 11, pp: 183-198.
23
Sargent, J.R.; Tocher, D.R. and Bell, J.G., 2002. The lipids in: Fish nutrition (Eds) R.W. Hardy, J.E. Halver, Academic Press, San Diego, CA, USA. pp: 181-257.
24
SOFIA. 2008. The State of World Fisheries and Aquaculture [online] Available from: http://www.fao.org/docrep/011 /i0250e/i0250e0 0.htm [Accessed 2010-02-01].
25
Tidwell, J.H. and Allan, G.L., 2002. Fish as food: aquaculture's contribution. Ecological and economic impacts and contributions of fish farming and capture fisheries. World Aquaculture. Vol. 33, pp: 44-48.
26
Turchini, G.M. and Francis, D.S., 2009. Fatty acid metabolism (desaturation, elongation and b-oxidation) in rainbow trout fed fish oil or linseed oil-based diets. British Journal of Nutrition. Vol. 102, pp: 69-81.
27
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی مقایسه ای اثرات ضدقارچی عصاره سیر و مالاشیت سبز روی تخم و تولید لارو ماهی قزل آلای رنگین کمان (Onchorhynchus mykiss) طی دوره انکوباسیون
هدف از این تحقیق، بررسی عصاره سیر به عنوان ماده ضدقارچ در طی دوره انکوباسیون تخم و لارو ماهی قزل آلا رنگین کمان و مقایسه اثرات آن با مالاشیت سبز است. بدین منظور 24 ساعت پس از لقاح، جهت ضدعفونی تخم ها، عصاره سیر در سه گروه با غلظت 50، 100 و 200 میلی گرم در لیتر و سه تکرار به ازای هر غلظت یک روز در میان و گروه مالاشیت سبز با غلظت 2 میلی گرم در لیتر هر یک به صورت حمام 30 دقیقه ای یک روز در میان استفاده شد. گروه شاهد فاقد هرگونه مواد ضدقارچی درنظر گرفته شد. نتایج مطالعه حاضر نشان داد که بیش ترین میزان تلفات تخم تا مرحله چشم زدگی برای گروه شاهد برابر 6/94±1477 عدد تخم (35/14±33/0 درصد) بود (0/05>P). هم چنین میزان تلفات تخم تا مرحله چشم زدگی در تیمار عصاره سیر با غلظت 200 میلی گرم در لیتر برابر 5/60±576 عدد تخم (11/09±13/0 درصد) بود که نسبت به سایر تیمارهای عصاره سیر به طور معنی داری کم تر بود (0/05>P). میزان تلفات تخم در فاصله چشم زدگی تا تخمگشایی برای تیمار سیر با غلظت 200 میلی گرم در لیتر برابر 9/88±335/6 عدد بوده است. درحالی که تلفات گروه شاهد برابر 7/00±666 عدد تخم برآورد شد (0/05>P). تیمارهای سبز مالاشیت (74/18±5/0 درصد، 4/2±207 عدد) و عصاره سیر با غلظت 200 میلی گرم در لیتر برابر (0/06±6/9 درصد، 3/8±241) کم ترین میزان تلفات را در مرحله تخم گشایی تا وزن 1 گرم داشتند (0/05>P). درحالی که میزان تلفات در گروه شاهد بالاتر از سایر تیمارها بود. از آن جاکه هیچ گونه بدشکلی و ناهنجاری ظاهری در لاروهای تفریخ شده مشاهده نشد لذا عصاره سیر با غلظت 200 میلی گرم در لیتر می تواند به عنوان مادهای ضدقارچ و بی خطر برای انسان و محیط زیست جهت ضدعفونی تخم های ماهی قزل آلا طی دوره انکوباسیون و لاروی به کار رود.
http://www.aejournal.ir/article_87041_3e393c15e8205b052b570af1d5038d9c.pdf
2018-12-22
269
276
مالاشیت سبز
تخم
عصاره سیر
قزل آلای رنگین کمان
کیا
امانی دنجی
kia_1843@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد علوم و تحقیقات تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
هومن
رجبی اسلامی
rajabi.h@srbiau.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد علوم و تحقیقات تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
مهدی
سلطانی
msoltani@ut.ac.ir
3
گروه بهداشت و بیماری های آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
ابولقاسم
کمالی
kamali.abolghasem@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد علوم و تحقیقات تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
سلطانی، م.؛ ظریف منش، ط. و ذریه زهرا، س.ج.، 1391. مطالعه تاثیر اسانس آویشن شیرازی بر میزان فعالیت سیستم عامل مکمل و لیزوزیم خون ماهی قزل آلا رنگین کمان. مجله علمی شیلات ایران. دوره 21، شماره 4، صفحات 13 تا 22.
1
سلطانی، م.؛ اسفندیاری، م.؛ خضرائی نیا، م.س. و سجادی، م.، 1388. ارزیابی اثرات اسانس آویشن شیرازی (Zataria multiflora) بر میزان تفریخ تخم قزل آلای رنگین کمان (Oncorhyncus mykiss) و درصد بقاء لارو آن در مقایسه با آب اکسیژنه و مالاشیت گرین. مجله تحقیقات دامپزشکی. شماره 2، صفحات 127 تا 134.
2
طیبی، ل. و اردکانی، س.، 1391. سنجش پارامترهای کیفی آب رودخانه گاماسیاب و عوامل موثر بر آن. علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 14، شماره 2، صفحات 37 تا 49.
3
فرزانفر، ع.، 1384. تکثیر و پرورش آزاد ماهیان. انتشارات موسسه تحقیقات شیلات ایران. 167 صفحه.
4
مخیر، ب.، 1374. بیماری های ماهیان پرورشی. انتشارات دانشگاه تهران. صفحات: 176 تا 194.
5
Ai, Q.H.; Mai, K.S.; Zhang, C.X., Xu, W.; Duan, Q.Y.; Tan, B.P. and Liufu, Z.G., 2004. Effects of dietary vitamin C on growth and immune response of Japanese seabass, Lateolabrax japonicus. Aquacult. Vol. 242, pp: 489-500.
6
Akhlaghi, M. and Bahaodini, A.A., 2012. Compare several treatments to combat Saprolegniasis in fertilized eggs of rainbow trout. Veterinary Journal Res and Develop. Vol. 94, pp: 18-24.
7
Bozin, B.; Mimica-Dukic, N.; Samojlik, I.; Goran, A. and Igic, R., 2008. Phenolics as antioxidants in garlic (Allium sativum). Food Chem. Vol. 111, No. 4, pp: 925-929.
8
Bruno, D.W. and Wood, B.P., 1994. Saprolegnia and other Oomycetes. In Fish Diseases and Disorders, Viral, Bacterial and Fungal Infections. Edited by P.T.K. Woo and D.W. Bruno. CABI Publishing, Wallingford, Oxon, United Kingdom. pp: 599-659.
9
Ebrahimzadeh Mousavi, H.A., 2006. Evaluation of eucalyptus essential oil in controlling fungal contamination of eggs of rainbow trout. Journal of Plant Res. Vol. 20, pp: 42-47.
10
Firoozbkhsh, F.; Afsarian, F.M.; Houshangi, S. and Badali, H., 2014. Antifungal effects of fennel, yarrow, fennel, cinnamon and Artemisia in vitro against S. parasitica. Iranian Journal of Medical Sci. Vol. 17, No. 5. pp: 60-69.
11
Ghannoum, M., 1990. Inhibition of Candida adhesion to buccal epithelial cells by an aqueous extract of Allium sativum (garlic). Journal of Apply Bacteriol. Vol. 68, No. 2. pp: 163-169.
12
Ghasemi Pirbaloti, A.; Ghasemi, M.R.; Momtaz, H.; Golparvar, A.R.; Hamedi, B. and Shahgholian, L., 2010. Effect of several medicinal plants of the bacterium Brucellaabortus (Brucella abortus) in terms of in vivo and in vitro. Herbal Medic.Vol. 1, pp: 21-28.
13
Harris, J.C.; Cottrell, S.L.; Plummer, S. and Loyd, D., 2001. Antimicrobial properties of Allium sativum (garlic). Appllied of Microb and Biotech. Vol. 57, No. 3. pp: 282-286.
14
Hussein, M.M.A.; Hamdy Hassan, W. and Ibrahim Moussa, I.M., 2011. Potential use of allicin (garlic, Allium sativum Linn, essential oil) against fish pathogenic bacteria and its safety for monosex Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Journal of Food Agri and Environ. Vol. 11, No. 1, pp: 696-699.
15
Kazemipour, Y.; Rezaei, M. and Keyvani, Y., 2004. Compare the qualitative effect of garlic extract, chamomile and mallow in healing the wounds of the surface appearance of common carp (Cyprinuscarpio). Res and Develop in Cattle Breeding and Aquacul. Vol. 17, No. 4, pp: 93-97.
16
Kitancharoen, N.; Yamato, A. and Hatai, K., 1998. Effect of sodium chloride hydrogen peroxide and malachite green on fungal infection in rainbow trout eggs. Biocontrol Sci. Vol. 3, pp: 113-115.
17
Marking, LL., Rach, J.J. and Schreier, T.M., 1994. Evaluation of antifungal agents for fish culture. Prog Fish Cult. Vol. 56, pp: 225-231.
18
Militz, T.A.; Southgate, P.C.; Carton, A.G. and Hutson, K.S., 2014. Efficacy of garlic (Allium sativum) extract applied as a therapeutic immersion treatment for Neobenedenia sp. management in aquaculture. Journal of Fish Dis. Vol. 37, pp: 451-461.
19
Mousavi, S.M.; Mirzargar, S.S.; Ebrahimzadeh Mousavi, H.; Omid Baigi, R.; Khosravi, A.; Bahonar, A. and Ahmadi, M.R., 2009. Evaluation of Antifungal Activity of New Combined Essential Oils in Comparison with Malachite Green on Hatching Rate in Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss) Eggs. Jornal of fish and aqua sci. Vol. 4, No. 2, pp: 103-110.
20
Noga, E.J., 1996. Fish Diseases and Diagnosis and Treatment. Mosby Year Book, Inc, St. Louis, Mo, USA.
21
Noga, E.J., 1996. Fish Disease, Diagnosis and Treatment. Mosby year book. 565 p.
22
Plakas, S.M.; Doerge, D.R. and Turnipseed, S.B., 1999. Disposition and metabolism of malachite green and other therapeutic dyes in fish. In Xenobiotics in fish. Ed. by Smith, D. J., W. H. Gingerich, and M. G. Beconi-Barker. Kluwer Academic/Plernum Publishers, New York. pp: 149-166.
23
Sagdic, O., 2003. Sensitivity of four pathogenic bacteria to Turkish thyme and oregano hydrosols. LWT. Food Sci and Techno. Vol. 36, No. 5, pp: 467-473.
24
Sharif Rohani, M.; Ebrahimzadeh Mousavi, H.; Khosravi, A.; Mokhayer, B.; Bahonar, A.; Mirzargar, S. and Mehrabi, Y., 2006. Evaluation of Geranium herbarum essence application in control of fungal contamination in Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) eggs. Journal of Facul of Veterin Medicine. Vol. 61, No. 3, pp: 269-272.
25
Sivam, G.P., 2001. Recent advances on the nutritional effects associated with the use of garlic as supplement. American Soci Nutr Sci. Vol. 131, pp: 1106-1108.
26
Srivastava, K., 2007. Green supply‐chain management: a state‐of‐the‐art literature review. International Journal of Manag Review, Vol. 9, No. 1, pp: 53-80.
27
Sokman, A.; Jones, B.M. and Erturk, M., 1999. The in vitro antibacterial activity of Turkish medicinal plants. Ethnopharmac. Vol. 67, pp: 79-86.
28
Venugopal, P.V. and Venugopal, T.V., 1995. Antidermatophytic activity of garlic (Allium sativum) in vitro. International Journal of Dermato. Vol.34, No. 4, pp: 278-289.
29
Wei, L. and Musa, N., 2008. Inhibition of Edwardsiella tarda and other fish pathogens by Alliumsativum extract. American-Eurasian Journal of Agri & Environ Sci. Vol. 3, pp: 692-696.
30
Willoughby, L.G., 1994. An ecological study of water at the medium of growth and reproduction of Saprolegnia from salmonid fish. Trans Br Mycol Soc. Vol. 87, No. 87, pp: 493-502.
31
Wolf, K., 1958. Fungus of Saprolegnia infestation on incubating fish eggs. Fishery health. Fish Wildlife Service U.S. Vol. 460, pp: 1-4.
32
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر نانو ذره آهن بر آنزیم های آسپارتات آمینوترانسفراز و آلانین آمینوترانسفراز سرم و فلور باکتریایی روده قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
در این تحقیق، تاثیرنانو ذره آهن بر آنزیم های آسپارتات آمینوترانسفراز (AST) و آلانین آمینوترانسفراز (ALT) سرم و فلور باکتریایی روده قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) مورد بررسی قرار گرفت. برای این منظور ماهیان پس از زیست سنجی با میانگین وزن 0/35±12/94 گرم (میانگین± انحراف معیار) به صورت تصادفی در 12 مخزن 500 لیتری (30 عدد در هر مخزن) رهاسازی و با رژیم های غذایی مختلف، دو بار در روز، به مدت هشت هفته تغذیه گردیدند. برای هر تیمار سه تکرار درنظر گرفته شد. جیره غذایی تیمار شاهد با اضافه کردن 60 میلی گرم بر کیلوگرم پودر FeSO4.7H2O به سایر مواد خشک جیره و جیره سایر تیمارهای حاوی نانو ذرات آهن با اضافه کردن 30، 60 و 90 میلی گرم بر کیلوگرم نانو ذرات Fe3O4 به عنوان منبع آهن (جایگزین سولفات آهن) به جیره پایه، آماده گردید. زیست سنجی برای بررسی وزن بدن هر 14 روز یک بار صورت گرفت. جهت اندازهگیری آنزیم های آسپارتات آمینوترانسفراز (AST) و آلانین آمینوترانسفراز (ALT) و فلور باکتریایی روده در پایان دوره آزمایشی از ماهیان به صورت تصادفی (3 عدد از هر تکرار) نمونه گیری صورت گرفت. باتوجه به نتایج بالاترین میزان ASTو ALT در تیمار شاهد و تیمار حاوی60 میلی گرم برکیلوگرم نانو ذره آهنبه دست آمد و هم چنین بین تیمار شاهد و تیمار حاوی90 میلی گرم برکیلوگرم نانو ذره آهن نیز اختلاف معنی دار بود (0/05>P).کم ترین میزان این آنزیم ها در تیمار حاوی 30 میلی گرم برکیلوگرم نانو ذره آهن مشاهده گردید که اختلاف معنی داری با تیمار حاوی 90 میلی گرم برکیلوگرم نانو ذره آهن نداشت (0/05<P). هم چنین دوزهای مختلف نانو ذره آهن تاثیر معنی داری بر میزان باکتری های اسیدلاکتیک روده ماهی قزل آلای رنگین کمان نداشت، اما تعداد کل باکتری های روده (توتال کانت) در تیمار حاوی 30 میلی گرم نانوذره آهن در کیلوگرم غذا به طور معنی داری نسبت به سایر تیمارها کم تر بود (0/05>P).
http://www.aejournal.ir/article_87095_67d11f2ab07333e9087f10e6e90bc55b.pdf
2018-12-22
277
284
نانو ذره
آهن
آنزیم های متابولیک
باکتری
قزل آلای رنگین کمان
علیرضا
ولی پور
valipour40@gmail.com
1
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
LEAD_AUTHOR
حمیده
کردی
hamide_kordi@yahoo.com
2
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
محمود
حافظیه
jhafezieh@yahoo.com
3
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، تهران، ایران
AUTHOR
علیرضا
شناور ماسوله
shenavar1969@gmail.com
4
موسسه تحقیقات بین المللی تاس ماهیان دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
بنایی، م.؛میرواقفی،ع.؛سورداگومیل، آ.؛ رفیعی، غ. و احمدی، ک.، 1391. مطالعه تغییرات فاکتورهای بیوشیمیایی خون و آسیب شناسی بافتی کبد ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) در تماس با غلظت های زیرکشنده دیازینون. نشریه محیط زیست طبیعی، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 65، شماره 3، صفحات 297 تا 313.
1
خارا، ح.؛ محمدزاده، و.؛ قیاسی، م. و رهبر، م.، 1392. بررسی برخی از فاکتورهای بیوشیمیایی و سرمی خون ماهیان قزل آلای رنگین کمان فاقد و واجد عفونت باکتریایی (در مزارع پرورشی استان مازندران). مجله توسعه آبزی پروری. سال 7، شماره 2، صفحات 17 تا 23.
2
خورشیدی،ز.؛کلباسی،م. وبهروزی،ش.،1394. بررسی تغییرات فلور باکتریایی روده و پوست ماهی کپور علفخوار (Ctenopharyngodon idella) تحت تاثیر نانو ذرات نقره کلوئیدی. فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان. سال 3، شماره 4، صفحات 79 تا 94.
3
راد، س.، 1390. بررسی اثرات نانو ذرات اکسیدآهن بر سلول های خونی و میزان آنزیم های کبدی موجود در خون موش صحرایی نر. پایان نامه کارشناسی ارشد رشته علوم جانوری گرایش فیزیولوژی. دانشگاه پیام نور. دانشکده علوم پایه. گروه علمی زیست شناسی. 129 صفحه.
4
راشدی، ح.؛ عموعابدینی، ق. و اسکندری، س.، 1389. زیست فناوری نانو. تالیف: پاپازوگلو، الف. و پارتا ساراسی، الف.، انتشارات دانشگاه تهران. 160 صفحه.
5
سالاری جو،ح.؛کلباسی،م. و عبدالله زاده،ا.، 1391. تاثیر نانو ذرات نقره کلوئیدی بر فلور باکتریایی پوست ماهی قزل آلای رنگین کمان. مجله اقیانوس شناسی. دوره 3، شماره 11، صفحات 83 تا 90.
6
شیربند، ع.، 1390. بررسی تأثیر غلظت نانو ذرات اکسیدآهن (10 نانومتر) بر بافت های تیروئید وکبد و میزان غلظت هورمون های تیروئیدی و آنزیم های کبدی در خون موش صحرایی. پایان نامه کارشناسی ارشد علوم جانوری گرایش فیزیولوژی. دانشگاه پیام نور. دانشکده علوم پایه مرکز تهران. 78 صفحه.
7
غفاری، م. و خسروانی زاده، ع.، 1391. اثر اسانس گل میخک (Eugenia cairyophillata) بارگذاری شده بر نانوذرات آهن روی شاخص های آنزیمی و بافت شناسی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله پاتوبیولوژی مقایسه ای. سال 9، شماره 4، صفحات 827 تا 836.
8
قاسمی، ا.؛مازندرانی، م.؛سوداگر، م. وحسینی، س.م.، 1396.اثرات تغذیه ای زردچوبه (Curcuma longa) بر کاهش آسیب های کبدی و کلیوی ناشی از مواجهه با سولفات مس در ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 70، شماره 2، صفحات 138 تا 147.
9
کلباسی،م.؛عبدالله زاده،ا. وسالاری جو،ح.، 1391.تاثیر نانو ذرات نقره کلوئیدی برجمعیت فلور باکتریایی روده ماهی قزل آلای رنگین کمان. مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 67، شماره 2، صفحات 181 تا 189.
10
مرتضوی تبریزی، ج.؛ شیعه، ج.؛ نوتاش، ش.؛ میرزایی، ح. و وطن خواه،ا.، 1390. تاثیر مقادیر مختلف مولتی آنزیم بر تغییرات آنزیم های کبدی و فاکتورهای عملکردی در ماهیان قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) پرواری. مجله دامپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی. دوره 5، شماره 1، صفحات 49 تا 55.
11
نایبی، م.، 1369. دنیای میکروب ها. انتشارات چهر. چاپ سوم. 485 صفحه.
12
Babushkina, I.V.; Borodulin, V.B.; Korshunov, G.V. and Puchinjan, D.M., 2010. Comparative study of anti-bacterial action of iron and copper nanoparticles on clinical Staphylococcus aureus strains.Saratov Journal of Medical Scientific Research. Vol. 6, No. 1, pp: 11-14.
13
Banaei, M.; Mirvaghefi, A.R.; Rafei, G.R. and Sureda Gomila, A., 2011. Effects of oral administration of silymarin on biochemical parameters of blood in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Fisheries (Iranian Journal of Natural Resources). Vol. 63, No. 4, pp: 271-286.
14
Bury, N.R. and Grosell, M., 2003. Mechanistic study of waterborne iron acquisition by a freshwater teleost fish, zebrafish (Danio rerio). Journal of Experimental Biology. Vol. 206, pp: 3529-3535.
15
Bury, N.R.; Walker, P.A. and Glover, C.N., 2003. Nutritive metal uptake in teleost fish. Journal of Experimental Biology. Vol. 206, pp: 11-23.
16
Crichton, R.R., 1991. Inorganic biochemistry of iron metabolism. West Sussex: Ellis Horwood Ltd. 355 p.
17
Halver, J.E. and Hardly, R.W., 1989. The vitamins in: Fish Nutrition. Halver J.E., (ed.), Academic press, New York, USA. pp: 31-109.
18
Karthikeyeni, S.; Siva Vijayakumar, T.; Vasanth, S.; Ganesh, A.; Manimegalai, M. and Subramanian, P., 2013. Biosynthesis of Iron oxide nanoparticles and its haematological effects on fresh water fish Oreochromis mossambicus. Journal of Academia and Industrial Research. Vol. 1, No. 10, pp: 645-649.
19
LeaMaster, B.R.; Walsh, W.A.; Brock, J.A. and Fujiok, R.S., 1997. Cold stress-induced changes in the aerobic heterotrophic gastrointestinal tract bacterial flora of red hybrid tilapia. Journal of Fish Biology. Vol. 50, No. 4, pp: 770-780.
20
Mendil, D.; Uluozlu, O.D.; Hasdemir, E.; Tuzen,M.; Sari, H. and Suicmez, M., 2005. Determination of trace metal levels in seven fish species in lakes in Tukat, Turkey. Food Chemistry, Vol. 90, No. 1-2, pp: 175-179.
21
Merrifield, D.L.; Bradley, G.; Harper, G.M.; Baker, R.T.M.; Munn, C.B. and Davies S.J., 2011. Assessment of the effects of vegetative and lyophilized Pediococcus acidilactici on growth, feed utilization, intestinal colonization and health parameters of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum). Aquaculture Nutrition. Vol. 17, No. 1, pp: 73-79.
22
Mickeniene, L. and Šyvokiene, J., 2001. Changes of the diversity of the bacteriocenosis in the digestive tract of fish under the impact of heavy metals. Ecology. Vol. 4, pp: 11-15.
23
Peres, H.; Santos, S. and Oliva-Teles, A., 2014. Blood chemistry profile as indicator of nutritional status in European sea bass (Dicentrarchus labrax). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 40, No. 5, pp: 1339-1347.
24
Rezae Ranjbar Sardari, R., 2010. Toxic Effects of nano particle of silver to the liver and spleen tissues in rats. Nanoscience and Nanotechnology Conference, Yazd province Payam Noor University. Vol. 26, No. 4, pp: 1-4.
25
Ringù, E.; Bendiksen, H.R.; Wesmajervi, M.S.;Olsen, R.E.; Jansen, P.A. and Mikkelsen, H., 2000. Lactic acid bacteria associated with the digestive tract of Atlantic salmon (Salmo salar L). Journal of Applied Microbiology. Vol. 89, No. 2, pp: 317-322.
26
Sadauskas, E.; Wallin, H.; Stoltenberg, M.;Vogel, U.; Doering, P.; Larsen, A. andDanscher, G., 2007. Kupffer cells are cenremoval of tral in the nanoparticles from the organism. Particle and Fibre Toxicology.Vol. 4, 10 p.
27
Shahsavani, D.; Mohri, M. and Kanani, H.G., 2010. Determination of normal values of some blood serum enzymes in Acipenser stellatus Pallas. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 36, No. 1, pp: 39-43.
28
Shariffi,M.; Jayawardena,P.A.H.L.; Yusoff, F.M. and Subasinghe, R., 2001. Immunological parameters of Javanese carp Puntiusgonionotus (Bleeker) exposed to copper and challenged with Aeromonas hydrophila. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 11, No. 4, pp: 281-291.
29
Shrivastava, S.; Bera, T.; Roy, A.; Singh, G.; Ramachandrarao, P. and Dash, D., 2007. Characterization of enhanced antibacterial effects of novel silver nanoparticles. Nanotechnology. Vol. 18, No. 22, pp: 225103-225112.
30
Shubayer, V.I.; Pisanic, T.R. and Jin, S., 2009. Magnetic nanoparticles for theragnostics. Advanced Drug Delivery Reviews. Vol. 61, No. 6, pp: 467-477.
31
Sun, Y.; Li, X.; Cao, J.; Zhang, W. and Wang, H.P., 2006. Characterization of zero-valent iron nanoparticles, Advanced Colloid Interface Science. Vol. 120, No. 1-3, pp: 47-56.
32
Taylor, E.N. and Webster, T.J., 2009. The use of superparamagnetic nanoparticles for prosthetic biofilm prevention. International Journal of Nanomedicine. Vol. 4, pp: 145-152.
33
Tran, N.; Mir, A.; Mallik, D.; Sinha, A.; Nayar, S. and Webster, T.J., 2010. Bactericidal effect of iron oxide nanoparticles on Staphylococcus aureus. International Journal of Nanomedicine. Vol. 5, pp: 277-283.
34
Van Dijk, J.P.; Lagerwerf, A.J.; van Eijk, H.G. and Leijnse, B., 1975. Iron metabolism in the tench (Tinca tinca L.). Studies by means of intravascular administration of 59 Fe (III) bound to plasma. journal of Comparative Physiology. Vol. 99, No. 4, pp: 321-330.
35
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر عصارة هیدروالکلی تفالة گوجه فرنگی به تنهایی و در ترکیب با پوشش خوراکی صمغ عربی حاوی اسانس شوید بر فساد میکروبی فیلة ماهی قزل آلای رنگین کمان در شرایط یخچال
رویکرد جدید صنایع غذایی استفاده از نگهدارنده های طبیعی به جای مصنوعی است. تفالة گوجه فرنگی پسماند کارخانجات فرآوری گوجه فرنگی است که با اثرات مفید بر سلامتی، می تواند جایگزین مناسبی برای نگه دارنده های شیمیایی معرفی شود. این مطالعه با هدف افزایش ماندگاری ماهی قزل آلای رنگین کمان توسط عصارة تفالة گوجه فرنگی و پوشش صمغ عربی حاوی اسانس شوید انجام شد. تیمارها شامل: گروه های شاهد، عصارة 3 درصد، عصارة 6 درصد، عصارة 3 درصد و صمغ عربی، عصارة 6 درصد و صمغ عربی، عصارة 3 درصد و صمغ عربی حاوی اسانس شوید 2 درصد و عصارة 6 درصد و صمغ عربی حاوی اسانس شوید 2 درصد بودند. نمونه ها در دمای 1±4 درجه سانتی گراد به مدت 12 روز نگه داری شده و در فواصل 3 روز مورد ارزیابی قرار گرفتند. تمامی تیمارها به طور معنی داری (0/05>p) جمعیت کلی باکتری ها، گونه های سودوموناس، باکتری های اسیدلاکتیک، انتروباکتریاسه، باکتری های سایکروتروف و کپک-مخمر را در مقایسه با گروه شاهد کاهش دادند. هم چنین پوشش دهی توسط صمغ عربی غنی شده با اسانس شوید به طور معنی داری (0/05>p) این اثرات را بهبود بخشید. براساس یافته های به دست آمده، نتیجه گیری می شود که عصارة تفالة گوجه فرنگی می تواند در ترکیب با پوشش خوراکی صمغ عربی حاوی اسانس شوید موجب کاهش رشد باکتری های عامل فساد فیلة ماهی قزل آلای رنگین کمان در شرایط یخچال شود.
http://www.aejournal.ir/article_87103_5f1cb6ad8919a141c44f75df6b69da1d.pdf
2018-12-22
285
290
عصارة تفالة گوجه فرنگی
پوشش صمغ عربی
اسانس شوید
فیلة ماهی قزل آلای رنگین کمان
افزایش ماندگاری
الهه
توکلی
elahe_tavakkoli@gmail.com
1
گروه بهداشت وکنترل کیفی مواد غذایی، دانشکدة پیرادامپزشکی، دانشگاه بوعلیسینا، همدان، ایران
AUTHOR
بهناز
بازرگانی گیلانی
b.bazargani@basu.ac.ir
2
گروه بهداشت وکنترل کیفی مواد غذایی، دانشکدة پیرادامپزشکی، دانشگاه بوعلیسینا، همدان، ایران
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
پژوهی الموتی
pajohi@gmail.com
3
گروه بهداشت وکنترل کیفی مواد غذایی، دانشکدة پیرادامپزشکی، دانشگاه بوعلیسینا، همدان، ایران
AUTHOR
Aghajanzadeh-Golshani, A.; Maheri-Sis, N.; MirzaeiAghsaghali, A. and Baradaran-Hasanzadeh, A., 2010. Comparison of nutritional value of tomato pomace and brewer’s grain for ruminants using in vitro gas production technique. Asian Journal of Animal and Veterinary Advances. Vol. 5, pp: 43-51.
1
Alaa, A.; Gaafar Mohsen, S.; Asker Zeinab, A.; Salama Bagato,O. and Ali, M.A., 2015. In-vitro, antiviral, antimicrobial and antioxidant potential activity of tomato pomace. International Journal of Pharmaceutical Sciences Review and Research. Vol. 32, pp: 262-272.
2
Ali, A.; Maqbool, M.; Ramachandran, S. and Alderson, P.G., 2010. Gum arabic as a novel edible coating for enhancing shelf-life and improving postharvest quality of tomato (Solanum lycopersicum L.) fruit. Postharvest Biology and Technology. Vol. 58, pp: 42-47.
3
Alizadeh Behbahani, B.; Shahidi, F.; Tabatabaei Yazdi, F.; Mortazavi, S.A. and Mohebbi, M., 2017. Use of Plantago major seed mucilage as a novel edible coating incorporated with Anethum graveolens essential oil on shelf life extension of beef in refrigerated storage. International Journal of Biological Macromolecules. Vol. 94, pp: 515-526.
4
Barbieri, R.; Coppo, E.; Marchese, A.; Daglia, M.; Sobarzo-Sánchez, E.; Nabavi, S.F. and Nabavi, S.M., 2017. Phytochemicals for human disease: An update on plant-derived compounds antibacterial activity. Microbiological Research. Vol. 196, pp: 44-68.
5
Binsi, P.K.; Nayak, N.; Ravishankar, C.N.; Sarkar, P.C.; Sahu, U. and Ninan, G., 2015. Comparative evaluation of gum arabic coating and vacuum packaging on chilled storage characteristics of Indian mackerel (Rastrelliger kanagurta). Journal of Food Science and Technology. Vol. 53, pp: 1889-1898.
6
Chagnon,F.; Guay, I.; Bonin, M.A.; Mitchell, G.; Bouarab, K.; Malouin, F. and Marsault, E., 2014. Unraveling the structure activity relationship of tomatidine, a steroid alkaloid with unique antibiotic properties against persistent forms of Staphylococcus aureus. European Journal of Medicinal Chemistry. Vol. 80, pp: 605-620.
7
Dávila-Aviña, J.E.; Villa-Rodríguez, J.A.; Villegas-Ochoa, M.A.; Tortoledo-Ortiz, O.; Olivas, G.I.; Ayala-Zavala, J.F. and González-Aguilar, G.A., 2014. Effect of edible coatings on bioactive compounds and antioxidant capacity of tomatoes at different maturity stages. Journal of Food Science and Technology. Vol. 51, pp: 2706-2712.
8
Ghorbani, M.; Aboonajmi, M.; Ghorbani Javid, M. and Arabhosseini, A., 2017. Effect of ultrasound extraction conditions on yield and antioxidant properties of the fennel seed (Foeniculum vulgare) extract. Journal of Food Science and Technology. Vol. 67, pp: 63-73.
9
Maqbool, M.; Ali, A.; Alderson, P.G.; Zahid, N. and Siddiqui, Y., 2011. Effect of a novel edible composite coating based on gum arabic and chitosan on biochemical and physiological responses of banana fruits during cold storage. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 59, pp: 5474-5482.
10
Navarro-González, I.; García-Valverde, V.; García Alonso, J. and Jesús Periago, M., 2011. Chemical profile, functional and antioxidant properties of tomato peel fiber. Food Research International. Vol. 44, pp: 1528-1535.
11
Negi, B.S. and Dave, B.P., 2010. In vitro antimicrobial activity of acacia catechu and its phytochemical analysis. Indian Journal of Microbiology. Vol. 50, pp: 369-374.
12
Ojagh, S.M.; Rezaei, M.; Razavi, S.H. and Hosseini, S.M.H., 2010. Effect of chitosan coatings enriched with cinnamon oil on the quality of refrigerated rainbow trout. Food Chemistry. Vol. 120, pp: 193-198.
13
Østerlie, M. and Lerfall, J., 2005. Lycopene from tomato products added minced meat: Effect on storage quality and color. Food Research International. Vol. 38, pp: 925-929.
14
Sánchez-Ortega, I.; Amaro-Reyes, A.; García Almendárez, B.E.; Barboza-Corona, J.E.; Santos-López, E.M. and Regalado, C., 2014. Antimicrobial edible films and coatings for meat and meat products preservation. The Scientific World Journal. Vol. 41, pp: 102-110.
15
Shirmohammadi, M. and Zarringhalami, S., 2017. Effect of extraction method and ultrasound on extraction efficiency and bioactive compounds of ethanolic flaxseed powder extract. Journal of Food Science and Technology. Vol. 67, pp: 11-18.
16
Silva-Beltrán, N.P.; Ruiz-Cruz, S.; Cira-Chávez, L.A.; Estrada-Alvarado, M.I.; Ornelas-Paz, J.D.J.; López Mata, M.A.; Del-Toro-Sánchez, C.L.; Ayala-Zavala, J.F. and Márquez-Ríos, E., 2015. Total phenolic, flavonoid, tomatine, and tomatidine contents and antioxidant and antimicrobial activities of extracts of tomato plant. International Journal of Analytical Chemistry. Vol. 23, pp: 1-10.
17
Song, Y.; Liu, L.; Shen, H.; You, J. and Luo, Y., 2011. Effect of sodium alginate-based edible coating containing different anti-oxidants on quality and shelf life of refrigerated bream (Megalobrama amblycephala). Food Control. Vol. 22, pp: 608-615.
18
Volpe, M.G.; Siano, F.; Paolucci, M.; Sacco, A.; Sorrentino, A.; Malinconico, M. and Varricchio, E., 2015. Active edible coating effectiveness in shelf-life enhancement of trout (Oncorhynchus mykiss) fillets. LWT- Food Science and Technology. Vol. 60, pp: 615-622.
19
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات پرورش ماهی کپورمعمولی در قفس بر ساختار جمعیت زئوپلانکتونی سد گلستان، استان گلستان
پرورشماهیدرقفسازسیستمهایجدیدپرورشآبزیاندرمحیطمحصوراست، هرچند ممکن است به واسطه پسماند غذای خورده نشده و مدفوع ماهیان، با ایجاد تغییرات فیزیکوشیمیایی در ستون آب جمعیت زئوپلانکتونی دستخوش تغییر گردد. بدین منظور، این مطالعه به پایش اثرات فعالیت پرورش ماهی کپورمعمولی در قفس بر ساختار جمعیت زئوپلانکتونی سد گلستانپرداخت. نمونه برداری در دو فصل بهار و تابستان در فواصل 5، 100، 200، 400، 1000 و 2000 متری از قفس صورت پذیرفت. نتایج نشان داد که پرورش ماهی کپور در قفس روی خصوصیات فیزیکوشیمیایی و نیز فراوانی زئوپلانکتون ها اثر معنی دار نداشت (0/05<p) و عوامل ذکر شده بیش تر تحت تاثیر فصل قرار داشتند. در این مطالعه 10 جنس از زئوپلانکتون ها شناسایی شد. یک گونه متعلق به راسته Cyrtophoridae، 2 گونه متعلق به راسته Hymenostomatida، یک گونه متعلق به راسته Oligotrichida، دو گونه متعلق به راسته Diplostraca و راستههای Cyclopoida، Calanoida، Arcellinida و Ploima هرکدام دارای یک گونه شناسایی شدند. در هر دو فصل بهار و تابستان بیش ترین درصد فراوانی متعلق به Cyclops به ترتیب با 64% و 21% بود. شاخص های تنوع زیستی برای زئوپلانکتون ها در فصل بهار کم تر از فصل تابستان بود. نتایج آزمون CCA نشان داد که در فصل بهار، فاکتور DO و در تابستان NH3 ارتباط منفی با فراوانی زئوپلانکتون ها داشت. به نظر می رسد این حجماز قفس های پرورش ماهی کپورمعمولی مستقر در سد گلستان تاثیر معنی داری بر عوامل کیفی آب و هم چنین روی جوامع زئوپلانکتونی شناسایی شده در محیط اطراف قفس ندارد به طوری که تغییرات مشاهده شده در ساختار زئوپلانکتونی بیش تر با تغییرات فصلی مرتبط بود.
http://www.aejournal.ir/article_87127_0f418ec65229ad3a7b4f4db6590fee4d.pdf
2018-12-22
291
300
پرورش در قفس
تنوع زیستی
زئوپلانکتون
سدگلستان
پریا
رئوفی
paria.raoofi@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
LEAD_AUTHOR
حجت الله
جعفریان
hojat.jafaryan@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
رحمان
پاتیمار
rpatimar@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
رسول
قربانی
rasulghorbani@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
محمد
هرسیج
m_harsij80@yahoo.com
5
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
افرائی بندپی،م.ع.؛ هاشمیان کفشگری، ع. و پرافکنده حقیقی، ف. 1395. بررسی ساختار جمعیت بزرگ بیمهرگان کفزی در سواحل جنوبی دریای خزر بهمنظور استقرار قفسهای پرورش ماهی. مجله علمی شیلات ایران. شماره 5، صفحات 23 تا 39.
1
پرافکنده حقیقی،ف.؛ افرائی بندپی، م.ع. و سلیمانی رودی، ع.، 1395. بررسی پراکنش، تراکم و زی توده بزرگ موجودات بنتیکی در محل استقرار پرورش ماهی در قفس در سواحل جنوبی دریای خزر (آبهای مازندران-کلارآباد). مجله علمی شیلات ایران. شماره 3، صفحات 91 تا 103.
2
فارابی، م.و.؛ پورغلام، ر. و آذری، ع.، 1393. بررسی امکان پرورش ماهی در قفس در کرانه جنوبی دریای خزر با تأکید بر پارامترهای دما، شوری و اکسیژن محلول آب. مجله شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد آزادشهر. سال 8، شماره 4، صفحات 13 تا 22.
3
کریمیان، ع.؛ ذاکری، م.؛فارابی، م.و.؛ حقی، م. وکوچنین، پ.، 1396. اثر پرورش ماهی قزلآلای رنگینکمان بر ساختار جمعیت زئوپلانکتونی منطقه عباس آباد، در جنوب دریای خزر. نشریه توسعه آبزیپروری. سال 11، شماره 3، صفحات 75 تا 94.
4
نصراله زاده ساروی،ح.؛افرایی بندپی،م.؛روحی،ه.؛واحدی، ح.؛نصراله تبار، ا.؛علومی،ی.؛یونسی پور،ح.؛مخلوق،آ.؛خداپرست،ن.؛یعقوب زاده،ز.؛رامین،م.؛ابراهیم زاده،م.؛ رازقیان،غ.ر. وطهماسبی،م.،1394. پایش مواد مغذی رسوبات بر پدیده شکوفایی جلبکی در منطقه حوزه جنوبی دریای خزر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور.
5
APHA (American Public Health Association). 2005. Standard Methods for The Examination of water and wastewater, 21th ed. American Public Health Association, Washington, DC. 1550 p.
6
Arauzo, A., 2003. Harmful effects of unionized ammonia on the zooplankton community in a deep waste treatment pond. Water Research. Vol. 37, pp: 1048-1054.
7
Azevedo-santos, V.M.; Pelicice, F.M.; Lima-Junior, D.P.; Magalhaes, A.L.B.; Orsi, M.L.; Vitule, J.R.S. and Agostinho, A.A., 2015. How to avoid fish introductions in Brazil: education and information as alternatives. Natureza & Conservação. Vol. 13, No. 2, pp: 123-113.
8
Bagheri, S.; Mirzajani, A. and Sabkara, J., 2016. Preliminary studies on the impact of fish cage culture rainbow trout on zooplankton structure in the southwestern Caspian Sea. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 15, No. 3, pp: 1202-1213.
9
Bays, J.S. and Crisman, T.L., 1983. Zooplankton and Trophic State Relationships in Florida Lakes. Canadian J of fisheries and aquatic sciences. Vol. 40, pp: 1813- 1819.
10
Beveridge, M.C.M., 1984. Cage and pen fish farming. Carrying capacity models and environmental impact. FAO Doc. Tech. Peches. No. 255. FAO, Rome. 126 p.
11
Beveridge, M.C.M., 1996. Cage aquaculture (2nd edition). Fishing News Books, Oxford.
12
Beveridge, M.C.M. and Stewart, J.A., 1998. Cage culture: limitations in lakes and reservoirs. In: InlandFisheryEnhancements(Ed. by T. Petr), FAO Fisheries Technical Paper 374. FAO, Rome. pp. 263-279.
13
Beveridge, M.C.M., 2004. Cage aquaculture. Oxford: Fishing News Books.
14
Bilous, O.; Barinova, S.; Ivanova, N. and Huliaieva, O., 2016. The use of phytoplankton as an indicator of internal 4 hydrodynamics of a large seaside reservoir case of the 5 Sasyk Reservoir, Ukraine. Ecohydrol. Hydrobiol. Vol. 16, No. 3, pp: 160-174.
15
Canfield, T.J. and Jones, J.R., 1996. Zooplankton Abundance, Biomass, and Size-Distribution in Selected Midwestern Waterbodies and Relation with Trophic State. Journal of Freshwater Ecology. Vol. 11, No. 2, pp: 171-191.
16
Cornell, G.E. and Whoriskey, F.G., 1993. The effects of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) cage culture on the water quality, zooplankton, benthos and sediment of Lac du Passage, Quebec. Aquaculture. Vol. 109, pp: 101-117.
17
Currie, D.R. and Small, E., 2004. Macro benthic community responses to longterm environmental change in an east Australian subtropical estuary. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 63, pp: 315-331.
18
Dauvin, J.C.; Ruellet, T.; Desroy, N. and Janson, A.L., 2007. The ecological quality status of the Bay of Seine and the Seine estuary: use of biotic indices. Marine Pollution Bulletin. Vol. 55, pp: 241-257.
19
Davenport, J.; Black, K.; Burnell, G.; Cross, T.; Cullory, S.; Ekaratne, S.; Furness, B.; Mulcahy, M. and Thetmeyer, H., 2003. Aquaculture the ecological issues. Oxford, UK: Blackwell Science Ltd.
20
Dias, J.D., 2008. Impacto da pisciculturaemtanques-redesobreaestrutura da comunidadezooplanctônicaem um reservatório subtropical, Brasil. Master Thesis. Universidade Estadual de Maringá, Maringá, Brazil. 40 p.
21
Fernandes, T.F.; Eleftherious, A. and Ackefors, H., 2001. The scientific principles underlying the monitoring of the environmental impacts of aquaculture. J Appl Ichthyol. Vol. 17, pp:181-193.
22
Guo, L. and Li, Z., 2003. Effects of nitrogen and phosphorus from fish cage-culture on the communities of a shallow lake in middle Yangtze River basin of China. Aquaculture. Vol. 226, pp: 201-212.
23
Hankanson, L., 2005. Changes to Lake Ecosystem structure resulting from fish cage farm emissions. Lakes & Reservoirs: Research and Management. Vol. 10, pp: 71-80.
24
Holmer, M.; Hansen, P.K.; Karakassis, I.; Borg J.A. and Schembri, P., 2008. Monitoring of environmental impacts of marine aquaculture. In: Holmer M, Black K, Duarte CM, Marba N, Karakassis I (eds) Aquaculture in the ecosystem. Springer, Dordrecht. pp: 47-85.
25
Hunt, R.J. and Matveev, V.F., 2005. The effects of nutrients and zooplankton community structure on phytoplankton growth in a subtropical Australian reservoir: An enclosure study. Limnologica. Vol. 35, pp: 90-101.
26
Jones, G.B.; Simon, B.M. and Horsley, R.W., 1982. Microbial sources of ammonia in freshwater lake sediments. J of general microbiology. Vol. 128, No. 12, pp: 2823-2831.
27
Kalantzi, I. and Karakassis L., 2006. Benthic impacts of fish farming: meta-analysis of community and geochemical data. Mar Pollut Bull. Vol. 52, pp: 484-493.
28
Kelly, L.A., 1992. Dissolved reactive phosphorus release from sediments beneath a freshwater cage aquaculture development in West Scotland. Hydrobiologia. Vol. 235/236, pp: 567-572.
29
Lawrence, S.C.; Malley, D.F.; Findlay, W.J.; Maciver, M.A. and Delbsere, I.L., 1987. Method for estimating dry weight of Freshwater Planktonic Cructaceans from measures of length and shape. Can.J. fish. Aquat. Vol. 44, pp: 246-274.
30
Liu, J.S.; Cui, Y.B. and Liu, J.K., 1997. Advances in studies on the effect of cage culture on the environment. Acta Hydrobiol Sin. Vol. 21, pp: 174-184.
31
Margalef, R., 1958. Information theory in ecology. Gen Syst. Vol. 3, pp: 36-71.
32
McLay, A. and Gordon-Rogers. K., 1997. Report of the Scottish Salmon Strategy Task Force. Scottish Agriculture, Environment and Fisheries Department, Edinburgh.
33
Mrcelic, G.J. and Sliskovic, M., 2010. The impact of fish cages on water quality in one fish farm in Croatia. World Academy of Science, Engineering and Technology. Vol. 4, pp: 8-25.
34
NCC. 1990. Fish Farming and the Scottish Freshwater Environment. A report to the Nature Conservancy Council. Institute of Aquaculture, Institute of Freshwater Ecology, Institute of Terrestrial Ecology. 285 p.
35
Neofitou, N.; Vafidis, D. and Klaoudatos, S., 2010. Spatial and temporal effects of fish farming on benthic community structure in a semi-enclosed gulf of the Eastern Medi terranean. Aquacult Environ Interact. Vol. 1, pp: 95-105.
36
Newell, G.E. and Newell, R.C., 1977. Marine plankton: a practical guide. Hutchinson, London. 244 p.
37
Newton, A.; Icely, J.D.; Falcao, M.; Nobre, A.; Nunes, J.P.; Ferreira, J.G. and Vale, C., 2003. Evaluation of eutrophication in the Ria Formosa coastal lagoon. Portugal. Continental Shelf Research. Vol. 23, pp: 1945-1961.
38
Pielou, E.C.J., 1966. The measurement of diversity in different types of biological collections. J. Theor. Biol. Vol. 13, pp: 131-144.
39
Philipose, K.K.; Krupessha, S.R.; Jayasree, L.; Ayasree, L.; Damodaran, D.G.; Syadarao, G.; Vaidya, N.G.; Mhaddolkar, S.S.; Sadhu, N. and Dub, P., 2012. Observations on variations in physic- chemical water parameters of marine fish cage farm off Karwar. Indian Journal Fish. Vol. 59, No. 1, pp: 83-88.
40
Pillay, T.V.R., 2004. Aquaculture and the environment. Oxford: Blackwell Publishing Ltd.
41
Rowland, S.J. and Allan, G.L., 2006. Development of techniques and evaluation of the potential of cage culture of silver perch for cotton farms. In: Proceedings of the 13th Australian Cotton Conference. Australian cotton growers research association, Narrabri, NSW, Australia. pp: 661-668.
42
Santos, R.M.; Rocha, G.S.; Rocha, O. and Santos Wisniewski, M.J., 2009. Influence of net cage fish cultures on the diversity of the zooplankton community in the Furnas hydroelectric reservoir, Areado, MG, Brazil. Aquaculture Research. Vol. 40, pp: 753-776.
43
Sawsan, M.A.; Ahmed, M.M. and Samiha, M.G., 2014. Variability of spatial and temporal distribution of zooplankton communities at Matrouh beaches, south-eastern Mediterranean Sea, Egypt. Egyptian Journal of Aquatic Research. Viol. 40, pp: 283-290.
44
Shannon, C.E. and Weaver, W., 1949. The Mathematical Theory of Communication. University of Illinois Press, Urbana. 144 P.
45
Silvert, W., 1992. Assessing environmental impacts of finfish aquaculture in marine waters. Aquaculture. Vol. 107, pp: 67-79.
46
Simpson, E.H., 1949. Measurement of diversity. Nature. Vol. 163, 688 p.
47
Smith, V.H., 2003. Eutrophication of freshwater and coastal marine ecosytems: a global problem. Envirom. Sci. Pollut. Res. Int. Vol. 10, pp: 126-139.
48
Sousa, W.; Attayde, J.L.; Rocha, E.S. and Anna, E.M.E., 2008. The response of zooplankton assemblages to variations in the water quality of four man-made lakes in semi-arid north-eastern Brazil. Journal of Plankton Research. Vol. 30, pp: 699-708.
49
Stephens,W.andFarris,J.L.,2004. A biomonitoring approach to aquaculture effluent characterization in channel catfish fingerling production. Aquacul. Vol. 241, p: 319-330.
50
Strain, P. and Hargrave, B., 2005. Salmon aquaculture, nutrient fluxes and ecosystem processes in southwestern New Brunswick. In: Hargrave BT (ed) Environmental effects of marine finfish aquaculture. Handbook of environmental chemistry, Vol 5M. Springer-Verlag, Berlin. pp: 29-57.
51
Thompson, B. and Lowe, S., 2004. Assessment of macro benthose response to sediment contamination in the San Fransisco estuary, Callifornia, USA. Environmental toxicology and chemistry. 23: 2178-2187.
52
Tundisi, J.G. and Matsumura-Tundisi, T., 2008. Limnologia. Oficina de textos, São Paulo. 631 p.
53
Veenstra, J.; Nolen, S.; Carroll, J. and Ruiz, C., 2003. Impact of net pen aquaculture on lake water quality. Water Science and Technology. Vol. 47, No. 12, pp: 293-300.
54
Wang, S.; Xie, P.; Wu, S. and Wu, A., 2007. Crustacean zooplankton distribution patterns and their biomass as related to trophic indicators of 29 shallow subtropical lakes. Limnologica. Vol. 37, No. 3, pp: 242-247.
55
Weston, D.P.; Phillips, M.J. and Kelly, L.A., 1996. Environmental impacts of salmonid culture. Chapter 16 in: Principals of Salmonid Culture. Developments in Aquaculture and Fisheries Science. Vol. 29, pp: 919-967.
56
Wetzel, R.G. and Likens, G.E., 1991. Limnological analysis. Springer-Verlag, New York, USA. 391 p.
57
Yan, D., 2005. Research needs for the management of water quality issues, particularly phosphorus and oxygen concentrations, related to salmonid cage aquaculture in Canadian freshwaters. Environmental Reviews. Vol. 13, pp: 1-19.
58
Yucel-Gier, G.; Kucuksezgin, F. and Kocak, F., 2007. Effects of fish farming on nutrients and benthic community structure in the Eastern Aegean (Turkey). Aquacult Res. Vol. 38, pp: 256-267.
59
Zanatta, A.S.; Perbiche-Neves, G.; Ventura, R.; Ramos, I.P. and Carvalho, E.D., 2010. Effects of a small fish cage farm on zooplankton assemblages (Cladocera and Copepoda: Crustacea) in a sub-tropical reservoir (SE Brazil). Pan-Am. J. Aquat. Sci. Vol. 5, No. 4, pp: 530-539.
60
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر دوره های گرسنگی و رشد جبرانی بر شاخص های رشد، بازماندگی و ترکیب لاشه بچه ماهی انگشت قد کپورمعمولی (Cyprinus carpio)
این تحقیق در تابستان 1391 در کارگاه آموزشی پژوهشی آبزی پروری دانشگاه آزاد آزادشهر به مدت 12 هفته انجام شد. تعداد 162 عدد بچه ماهی کپور با وزن متوسط 3±25 گرم با تراکم 18عدد در مخازن 1000 لیتری توزیع و تغذیه شدند. آزمایشات در 3 تیمار و 3 تکرار به صورت زیر انجام گرفت: تیمار شاهد: دو بار در روز غذادهی، تیمار 1: دو هفته تغذیه + یک هفته گرسنگی، تیمار 2: یک هفته تغذیه + دو هفته گرسنگی. نرخ غذادهی براساس 8 درصد وزن بدن کل بچه ماهیان یک تکرار، در روز صورت گرفت. در طول دوره پرورش فاکتور رشد مورد بررسی قرار گرفت. نتایج نشان داد که بین تیمارهای مورد بررسی از نظر وزن بدن بچه ماهی اختلاف معنی دار آماری مشاهده می گردد (0/05>P).بیش ترین افزایش وزن را بچه ماهیان در تیمار شاهد که روزانه تغذیه می شدند داشتند.اختلاف معنی داری بین تیمارها در میزان افزایش وزن بدن، وزن نهایی، ضریب تبدیل غذایی، ضریب رشد ویژه و فاکتور وضعیت مشاهده شد. ولی بهترین ضریب تبدیل غذایی مربوط به تیمار 3 که یک هفته تغذیه و 2 هفته گرسنگی داشتند بود. در آنالیز ترکیب لاشه بیش ترین پروتئین و کم ترین مقدار چربی مربوط به تیمار 3 بود. در مجموع گرسنگی روی وزن بدن بچه ماهی کپورمعمولی تاثیر معنی داری خواهد گذاشت ولی تحت شرایط آزمایش انجام شده شامل تعویض آب از طریق سیفون کردن، هوادهی توسط پمپ هوا و در شرایط سرپوشیده سالن، غذادهی کامل بچه ماهیان برای رسیدن به بهترین میزان رشد توصیه می شود.
http://www.aejournal.ir/article_87361_df4a12e646f0bb2c9ea1bcfde7335c63.pdf
2018-12-22
301
308
رشد جبرانی
گرسنگی
شاخص های رشد
بازماندگی
کپورمعمولی
مهدی
عادلی
mehdi.adeli1361@chmail.ir
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، واحد آزادشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، آزادشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
شهرام
ملکی
sahram.m@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
AUTHOR
افشین
قلیچی
afshin.ghelichi@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، واحد آزادشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، آزادشهر، ایران
AUTHOR
سعید
امیری
am_charvadeh@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، واحد تنکابن، دانشگاه آزاد اسلامی، تنکابن، ایران
AUTHOR
زینب
عادلی
adeli.z@yahoo.com
5
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، واحد آزادشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، آزادشهر، ایران
AUTHOR
ایمانی، ا.، 1388. شاخص های تغذیه و رشد در ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus myksis) طی دوره های مختلف محرومیت غذایی و غذادهی مجدد. مجله شیلات ایران. شماره 2، صفحات 2 تا 11.
1
خوش خلق، م.، 1384. تکثیر و پرورش کپور و سایر ماهیان پرورشی. انتشارات دانشگاه گیلان. صفحات 2 تا 11.
2
علی اصغری، م.، 1390. اثرات گرسنگی و رشد جبرانی روی وزن نهایی و بازماندگی بچه ماهی سفید دریای خزر (Rutilus frisii kutum). سمینار تازه های علم تغذیه و اصلاح دام و طیور.
3
محمدنژادشموشکی، م.، 1389. اثر رشد جبرانی و تاثیر گرسنگی روی شاخص های رشد و بازماندگی بچه ماهی سفید (Kamensky, 1901)( Rutilus frisii kutum). مجله آبزیان و شیلات. شماره 4، صفحات 45 تا 52.
4
Ali, M.; Nicieza, A. and Wootton, R.J., 2003. Compensatory growth in fishes: a response to growth depression. Fish and Fisheries. Vol. 4, pp: 147-190.
5
Blake, R.W.; Inglis, S.D. and Chan, K.H.S., 2006. Growth, carcass composition and hormonal levels in cyclically fed rainbow trout. Journal of fish Biology. Vol. 68, pp: 806-817.
6
Cavalli, L.; Chappaz, R.; Bouchard, P. and Brun, G., 1997. Food availability and growth of the brook trout, Salvelinus fontinalis (Mitchill), in a French Alpine lake. Fish. Manage. Ecol. Vol. 4, pp: 167-177.
7
Chappaz, R.; Olivart, G. and Brun, G., 1996. Food availability and growth rate in natural populations of the brown trout (Salmo trutta) in Corsican streams. Hydrobiology. Vol. 331, pp: 63-69.
8
Falahatkar, B.; Foadian, A.; Abbasalizadeh, A. and Tolouei Gilani, M.H., 2007. Effects of starvation and feeding strategies on growth performance in sub-yearling great sturgeon (Huso huso). Aquaculture Europe 2007. October, Istanbul, Turkey. pp: 24-27.
9
Fraser, D.J.; Weir, L.K.; Darwish, T.L.; Eddington, J.D. and Hutchings, J.A., 2007. Divergent compensatory growth responses within species: linked to contrasting migrations in salmon? Oecologia. Vol. 153, pp: 543-553.
10
Gjedrem, T., 2000. Genetic improvement of cold-water fish species. Aquaculture Research. Vol. 31, pp: 25-33.
11
Hornick, J.L.; Eenaeme, C.V.; Gerard, O. and Dufrance, I., 2000. Mechanism of reduced and compensatory growth. Domestic Animal Endocrinology. Vol. 19, pp: 121-132.
12
Hornick J.L., Eenaeme C.V., Gerard O. and Dufrance, I., 2002. Hybrid tilapia Oreochromis mossambicus × O. niloticus following food deprivation. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 21, pp: 389-393.
13
Jobling, M.; Jørgensen, E.H. and Siikavuopio, S.I., 1993. The influence of previous feeding regime on the compensatory growth response of maturing and immature Arctic charr, Salvelinus alpinus. Journal of Fish Biology. Vol. 43, pp: 409-419.
14
Jobling, M.; Koskela, J. and Winberg, S., 1999. Feeding and growth of whitefish fed restricted and abundant rations: influences on growth heterogeneity and brain serotonergitic activity. J. Fish Biol. Vol. 54, pp: 437-449.
15
Jobling, M.; Meloy, O.H.; Dos Santos, J. and Christiansen, B., 1994. The compensatory growth response of the Atlantic cod: effects of nutritional history. Aquaculture International. Vol. 2, pp: 75-90.
16
Jones, J.I. and Clemmons, D.R., 1995. Insulin like gowth factor and their binding proteins: Biological actions. Endocrinological Reviews. Vol. 16, pp: 3-34.
17
Kohlmann, K.; Gross, R.; Murakaeva, A. and Kersten, P., 2003. Genetic variation and structure of common carp populations throughout the distribution range inferred from allozyme, microsatellite and mtDNA marker. Aquatic Living Resources. Vol. 16, pp: 421-431.
18
Mackenzie, D.S.; Vanputte, C.M. and Leiner, K.A., 1998. Nutrient regulation of endocrine function n fish. Aquaculture. Vol. 161, pp: 3-25.
19
Naderi Jolodar, M. and Abdoli, A., 2004. Fish Species Atlas of South Caspian Sea Basin (Iranian Waters). Ministry of Jahad -e- Agriculture, Iranian Fisheries Research Organization. 80 p.
20
Nicieza, A.G. and Metcalfe, N.B., 1997. Growth compensation in juvenile Atlantic salmon: responses to depressed temperature and food availability. Ecology. Vol. 78, pp: 2385-2400.
21
Nikki, J.; Pirhonen, J.; Jobling, M. and Karjalainen, J., 2004. Compensatory growth in juvenile rainbow trout, Oncorhynchus mykiss, held individually. Aquaculture. Vol. 235, pp: 285-296.
22
Paul, A.J.; Paul, J.M. and Smith, R.L., 1995. Compensatory growth in Alaska yellowfin sole, Pleuronectes asper, following food deprivation. J. Fish Biol. Vol. 46, pp: 442-448.
23
Rehulka, J., 2000. Influence of astaxanthin on growth rate, condition, and some blood indices of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 190, pp: 27-47.
24
Russell, N.R. and Wootton, R.J., 1992. Appetite and growth compensation in the European minnow, Phoxinus phoxinus (Cyprinidae) following short periods of food restriction. Environ. Biol. Fish. Vol. 34, pp: 277-285.
25
Tian, X. and Qin, J.G., 2003. A single phase of food deprivation provoked Tilapia, Oreochromis mossambicus × O. niloticus reared in seawater. Aquaculture. Vol. 189, pp: 101-108.
26
Wang, Y.; Cui, Y.; Yang, Y. and Cai, F., 2000. Compensatory growth in hybrid tilapia, Oreochromis mossambicus × O. niloticus reared in seawater. Aquaculture. Vol. 189, pp: 101-108.
27
Wang, Y.; Cui, Y.; Yang, Y. and Cai, F., 2005. Partial compensatory growth in hybrid tilapia Oreochromis mossambicus × O. niloticus following food deprivation. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 21, pp: 389-393.
28
Zhu, X.; Cui, Y.; Ali, M. and Wootton, R.J., 2001. Comparison of compensatory growth responses of juvenile threespined stickleback and minnow following similar food deprivation protocols. J. Fish Biol. Vol. 58, pp: 1149-1165.
29
Zhu, X.; Xie, S.T.; Zou, Z.; Lei, W.; Cui, Y.; Yang, Y. and Wooton, R.J., 2004. Compensatory growth and food consumption in gibel carp, carassius auratus gibelio, and Chinese longsnout catfish, Leiocassis longirostris, experiencing cycles of feed deprivation and re-feeding. Aquaculture. Vol. 241, pp: 235-247.
30
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه اثر پکتین به عنوان افزودنی غذایی در مقابله با مسمومیت کادمیمی در ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio)
این مطالعه به بررسی اثر حفاظتی پکتین بر تغییرات برخی فاکتورهای بیوشیمیایی خون ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) در مواجهه با کادمیم پرداخته است. برای این منظور غلظتهای مختلف زیرکشنده کادمیم (125 و 250 میلیگرم در کیلوگرم جیره خشک) به تنهایی و همچنین بهصورت ترکیبی با 0/5 درصد پکتین به جیره غذایی افزوده شد. بچهماهیان کپورمعمولی (میانگین وزنی 7±37/5 گرم) بهمدت 21 روز با شش جیره غذایی مختلف تغذیه شدند. ماهیانی گروه اول (شاهد) تنها با خوراک پایه بدون هیچ گونه افزودنی، گروه دوم و سوم بهترتیب با 150 و 250 میلیگرم کادمیم در کیلوگرم غذا، گروه چهارم و پنجم با 150 و 250 میلیگرم کادمیم بههمراه 0/5 درصد پکتین و گروه ششم تنها با 0/5 درصد پکتین تغذیه شدند. نمونهگیری از خون ماهیان پس از 21 روز تغذیه با جیرههای غذایی اختصاصی هر گروه صورت گرفت و متعاقباً برخی از پارامترهای بیوشیمیایی خون مورد سنجش قرارگرفتند. مطابق با نتایج، درهر دو گروه دریافت کننده کادمیم و پکتین میزان آنزیمهای AST، ALT و ALP، پروتئین کل، آلبومین، گلبولین، تریگلیسرید، کراتینین و گلوکز تغییرات معنیداری نسبت به گروه شاهد نشان ندادند. در گروههای دریافت کننده کادمیم به تنهایی سطح آنزیمهای AST و ALT تغییرات معنیداری نسبت به گروه شاهد نشان داد. بر مبنای نتایج بهدست آمده بهنظر می رسد که پکتین به شکل بالقوهای میتواند اثرات مضر ناشی از فلزات سنگین را کاهش دهد.
http://www.aejournal.ir/article_87398_509c91619f1a61359b8db364d30fe04b.pdf
2018-12-22
309
316
فلزات سنگین
جاذب زیستی
کپور معمولی
بیوشیمی خون
پکتین
محمد
محیسنی
mohiseni@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه لرستان، خرم آباد، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد
امینی چرمهینی
mamini57@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی خاتم الانبیاء، بهبهان، ایران
AUTHOR
مریم
کریمی
karimi1370.farda@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی خاتم الانبیاء، بهبهان، ایران
AUTHOR
دارا
باقری
dara.bagheri@ut.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه خلیج فارس، برازجان، ایران
AUTHOR
سبحانیان، خ. و ملک نیا، ن.، 1387. ترجمه ویرایش 27 بیوشیمی مصور هارپر (موری، ر.ک.، گرانر، د.ک.، رادول، و.)، چاپ سوم، انتشارات ارجمند. 792 صفحه.
1
سلطانی، م. و خوشباور رستمی، ح.، 1381. مطالعه اثر دیازینون بر برخی شاخصهای خونی و بیوشیمیایی چالباش(Acipenser guldunstadi). مجله علوم و فنون دریایی ایران. جلد 1، شماره 4. صفحات 65 تا 75.
2
فولادیفرد، ر. و عظیمی، ع.،1387. ارزیابی تمایل جذب فلزات نیکل و کادمیم توسط توده زیستی حاصل از لجن فاضلاب در مقایسه با دیگر جاذبها، علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 16، شماره 3، صفحات 35 تا 49.
3
Acker, C.I. and Nogueira, C.W., 2012. Chlorpyrifos acute exposure induces hyperglycemia and hyperlipidemia in rats. Chemosphere. Vol. 89, pp: 602-608.
4
Agrahari, S.; Pandey, K.C. and Gopal, K., 2007. Biochemical alteration induced by monocrotophos in the blood plasma of fish, Channa punctatus (Bloch). Pesticide Biochemistry and Physiology. Vol. 88, pp: 268-272.
5
Almeida, J.; Diniz, Y.; Marques, S.; Faine, L.; Ribas, B.; Burneiko, R. and Novelli, E., 2002. The use of the oxidative stress responses as biomarkers in Nile tilapia (Oreochromis niloticus) exposed to in vivo cadmium contamination. Environment International. Vol. 27, pp: 673-679.
6
Andrews, S.R.; Sahu, N.P.; Pal, A.K. and Kumar, S., 2009. Haematological modulation and growth of Labeo rohita fingerlings: effect of dietary mannan oligosaccharide, yeast extract, protein hydrolysate and chlorella. Aquaculture Research.Vol. 41, pp: 61-69.
7
Baghshani, H. and Shahsavani, D., 2013. Effects of lead acetate exposure on metabolic enzyme activities in selected tissues of common carp (Cyprinus carpio). Comparative Clinical Pathology. Vol. 22, pp: 903-907.
8
Berrahal, A.A.; Nehdi, A.; Hajjaji, N.; Gharbi, N. and El Fazâa, S., 2007. Antioxidant enzymes activities and bilirubin level in adult rat treated with lead. Comptes Rendus Biologies. Vol. 330, pp: 581-588.
9
Binukumari, S.; Devi, K.A. and Vasanthi, J., 2016. Applications in environmental risk assessment of biochemical analysis on the Indian fresh water fish, Labeo rohita exposed to monocrotophos pesticide. Environmental Toxicology and Pharmacology. Vol. 47, pp: 200-205.
10
Chowdhury, M.; Baldisserotto, B. and Wood, C., 2005. Tissue-specific cadmium and metallothionein levels in rainbow trout chronically acclimated to waterborne or dietary cadmium. Archives of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 48, pp: 381-390.
11
Cicik, B. and Engin, K., 2005. The effects of cadmium on levels of glucose in serum and glycogen reserves in the liver and muscle tissues of Cyprinus carpio (L., 1758). Turkish Journal of Veterinary and Animal Sciences, Vol. 29, pp: 113-117.
12
Crini, G. and Badot, P.M., 2008. Application of chitosan, a natural aminopolysaccharide, for dye removal from aqueous solutions by adsorption processes using batch studies: a review of recent literature. Progress in Polymer Science. Vol. 33, pp: 399-447.
13
Dalia, M., 2010. Effect of using pectin on lead toxicity. Journal of American Science. Vol. 6, pp: 541-554.
14
De Smet, H. and Blust, R., 2001. Stress responses and changes in protein metabolism in carp Cyprinus carpio during cadmium exposure. Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 48, pp: 255-262.
15
Eliaz, I.; Weil, E. and Wilk, B., 2007. Integrative medicine and the role of modified citrus pectin/alginates in heavy metal chelation and detoxification five case reports. Complementary Medicine Research. Vol. 14, pp: 358-64.
16
Firat, Ö. and Kargın, F., 2010. Biochemical alterations induced by Zn and Cd individually or in combination in the serum of Oreochromis niloticus. Fish physiology and biochemistry. Vol. 36, pp: 647-653.
17
Guess, B.; Scholz, M.; Strum, S.; Lam, R.; Johnson, H. and Jennrich, R., 2003. Modified citrus pectin (MCP) increases the prostate-specific antigen doubling time in men with prostate cancer: a phase II pilot study. Prostate Cancer and Prostatic Diseases. Vol. 6, pp: 301-304.
18
Has-Schön, E.; Bogut, I.; Vuković, R.; Galović, D.; Bogut, A. and Horvatić, J., 2015. Distribution and age-related bioaccumulation of lead (Pb), mercury (Hg), cadmium (Cd), and arsenic (As) in tissues of common carp (Cyprinus carpio) and European catfish (Sylurus glanis) from the Buško Blato reservoir (Bosnia and Herzegovina). Chemosphere. Vol. 135, pp: 289-296.
19
John, P.J., 2007. Alteration of certain blood parameters of freshwater teleost Mystus vittatus after chronic exposure to Metasystox and Sevin. Fish physiology and Biochemistry. Vol. 33, pp: 15-20.
20
Johnson, A.M.; Rohlfs, E.M. and Silverman, L.M., 1999. Proteins. In: Burtis CA, Ashwood ER, editors. Tietz textbook of clinical Chemistry. 3rd ed.Philadelphia: W.B. Saunders Company. pp: 477-540.
21
Kaveeshwar, A.R.; Sanders, M.; Ponnusamy, S.K.; Depan, D. and Subramaniam, R., 2017. Chitosan as a biosorbent for adsorption of iron (II) from fracking wastewater. Polymers for Advanced Technologies. Vol. 28, pp: 1-9.
22
Mata, Y.; Blázquez, M.; Ballester, A.; González, F. and Muñoz, J., 2010. Studies on sorption, desorption, regeneration and reuse of sugar-beet pectin gels for heavy metal removal. Journal of Hazardous Materials. Vol. 178, pp: 243-248.
23
Mekkawy, I.A.; Mahmoud, U.M.; Wassif, E.T. and Naguib, M., 2011. Effects of cadmium on some haematological and biochemical characteristics of Oreochromis niloticus (Linnaeus, 1758) dietary supplemented with tomato paste and vitamin E. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 37, pp: 71-84.
24
Mohiseni, M.; Asayesh, S.; Shafiee Bazarnoie, S.; Mohseni, F.; Moradi, N.; Matouri, M. and Mirzaee, N., 2016. Biochemical Alteration Induced by Cadmium and Lead in Common Carp via an Experimental Food Chain. Iranian Journal of Toxicology. Vol. 10, pp: 25-32.
25
Mohiseni, M.; Sepidnameh, M.; Bagheri, D.; Banaee, M. and Nematdust Haghi, B., 2017. Comparative effects of Shirazi thyme and vitamin E on some growth and plasma biochemical changes in common carp (Cyprinus carpio) during cadmium exposure. Aquaculture Research. Vol. 48, pp: 4811-4821.
26
Moss, D. and Henderson, A., 1999. Clinical enzymology in TITETZ textbook of clinical chemistry. In Textbook of clinical chemistry,eds. C. Burits and E. Ashwood, Philadelphia: WB Saunders Company. pp: 671-673.
27
Öner, M.; Atli, G. and Canli, M., 2009. Effects of metal (Ag, Cd, Cr, Cu, Zn) exposures on some enzymatic and non-enzymatic indicators in the liver of Oreochromis niloticus. Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 82, pp: 317-325.
28
Othman, A.I. and El-Missiry, M.A., 1998. Role of selenium against lead toxicity in male rats. Journal of Biochemistry and Molecular Toxicology. Vol. 12, pp: 345-349.
29
Reynders, H.; Van Campenhout, K.; Bervoets, L.; De Coen, W.M. and Blust, R., 2006. Dynamics of cadmium accumulation and effects in common carp (Cyprinus carpio) during simultaneous exposure to water and food (Tubifex tubifex). Environmental Toxicology and Chemistry. Vol. 25, pp: 1558-1567.
30
Rifai, N.; Bachorik, Z.L. and Albers, J.J., 1999. Lipids, lipoproteins and apolipoproteins in: Burtis CA, Ashwood ER, editors. Tietz textbook of clinical Chemistry, W.B. Saunders Company, Philadelphia, pp: 809-861.
31
Sathya, V.; Ramesh, M.; Poopal, R. and Dinesh, B., 2012. Acute and sublethal effects in an Indian major carp Cirrhinus mrigala exposed to silver nitrate: Gill Na+/ K+-ATPase, plasma electrolytes and biochemical alterations. Fish and shellfish Immunology. Vol. 32, pp: 862-868.
32
Schiewer, S. and Patil, S.B., 2008. Pectin-rich fruit wastes as biosorbents for heavy metal removal: equilibrium and kinetics. Bioresource Technology. Vol. 99, pp: 1896-1903.
33
Shalan, M.; Mostafa, M.; Hassouna, M.; El-Nabi, S.H. and El-Refaie, A., 2005. Amelioration of lead toxicity on rat liver with vitamin C and silymarin supplements. Toxicology. Vol. 206, pp: 1-15.
34
Sivaprasad, R.; Nagaraj, M. and Varalakshmi, P., 2003. Combined efficacies of lipoic acid and meso-2, 3-dimercaptosuccinic acid on lead-induced erythrocyte membrane lipid peroxidation and antioxidant status in rats. Human & Experimental Toxicology. Vol. 22, pp: 183-192.
35
Sobha, K.; Poornima, A.; Harini, P. and Veeraiah, K., 2007. A study on biochemical changes in the fresh water fish, Catla catla (Hamilton) exposed to the heavy metal toxicant cadmium chloride. Kathmandu university journal of science, engineering and technology. Vol. 3, pp: 1-11.
36
Wagner, D.D. and Thomas, O., 1977. A rye type growth depression of chicks fed pectin. Poultry Science. Vol. 56, pp: 615-619.
37
Wright, D.A., and Welbourn,P., 2002. Environmental toxicology, Cambridge University Press, New York, First published, pp: 249-300.
38
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی میزان غلظت سرب در آب و ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) در تالاب بین المللی چغاخور
آلودگی اکوسیستم های طبیعی با طیف گسترده ای از آلاینده های زیست محیطی به خصوص فلزات سنگین، در دهه های اخیر توجه زیادی را به خود جلب کرده است. کپورمعمولی به دلیل بزرگی اندازه بدن و میانگین سنی بالاتر می تواند میزان بالایی از فلزات سنگین را در خود جذب نماید. هم چنین رژیم همه چیزخواری و استفاده از جانوران کفزی و نرم تنان توسط این ماهی، امکان تجمع مقادیر بالایی از فلزات سنگین را در اندام های مختلف این ماهی به خصوص کبد، کلیه و عضله فراهم آورده است. درپژوهشحاضر، میزان تجمع سرب در عضله ماهی کپور معمولی(Cyprinus carpio) و آب تالاب چغاخور مورد بررسیقرارگرفت. بدین منظور، تعداد45 نمونه کپورمعمولی توسط تور صیادی به همراه 45 نمونه آب در سه ایستگاه در تابستان و بهار ۱۳۹۵هر ۱۵ روز یک بار، نمونه برداری گردید. پساز تعیین سن، جنس و وزن هر نمونه ماهی و اندازه گیری پارامترهای فیزیکی شیمیایی آب، میزان فلز سرب در هر نمونه آب و ماهی بعد از عصاره گیری، با استفادهازدستگاه اسپکترومتریجذباتمی کورهگرافیتی مورد اندازه گیری قرار گرفت.نتایج نشان داد باقی مانده سرب در عضله ماهی کپور 0/2 میلی گرم بر کیلوگرم است که از میزان استاندارد سازمان بهداشت جهانی (0/5 میلی گرم بر کیلوگرم) پایین تر است ولی با افزایش میزان مصرف کودها و سموم شیمیایی احتمال دارد به تدریج میزان آلودگی افزایش یافته و به درجه خطر برسد. وجود فعالیت های کشاورزی گسترده درحاشیه تالاب، از عوامل ورود پساب ناشی از کودها و سموم کشاورزی است که حیات آبزیان را تحت تاثیر قرار داده است.
http://www.aejournal.ir/article_87415_689cf00fa39000dccfd80a44aa0f192b.pdf
2018-12-22
317
324
تالاب چغاخور
چهارمحال بختیاری
ماهی کپورمعمولی
پارامترهای زیست شناختی
مهسا
تکش
mahsa_takesh@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، واحد اصفهان (خوراسگان)، دانشگاه آزاد اسلامی، اصفهان (خوراسگان)، ایران
AUTHOR
عاطفه
چمنی
atefehchamani@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، واحد اصفهان (خوراسگان)، دانشگاه آزاد اسلامی، اصفهان (خوراسگان)، ایران
LEAD_AUTHOR
ثمر
مرتضوی
mortazavi.s@gmail.com
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
AUTHOR
امینی رنجبر، غ. وستوده نیا، ف.،1384. تجمع فلزات سنگین در بافت عضله ماهی کفال دریای خزر در ارتباط با برخی مشخصات بیومتریک (طول استاندارد، وزن، سن و جنسیت). مجله علمی شیلات ایران. سال 14، شماره 3، صفحات 1 تا 18.
1
امینی، ح.، 1381. راهنمای جهانگردی استان چهارمحال و بختیاری. سازمان ایرانگردی و جهانگردی. صفحات 12 تا 13.
2
پاکزاد، م.؛ چمنی، ع. و بسالت پور، ع.، 1396. ﻣﯿﺰان ﺗﺄﺛﯿﺮﮔﺬاری ﭘﺎراﻣﺘﺮﻫﺎی ﻓﯿﺰﯾﮑﯽ و ﺷﯿﻤﯿﺎﯾﯽ آب و وﯾﮋﮔﯽﻫﺎی رﯾﺨﺖﺷﻨﺎﺳﯽ ﺑﺮ ﻣﯿﺰان ﺗﺠﻤﻊ ﮐﺎدﻣﯿﻮم در ﮐﭙﻮر ﻣﻌﻤﻮﻟﯽ (Cyprinus carpio). ﻧﺸﺮﯾﻪ ﻓﻦآوریﻫﺎی ﻧﻮﯾﻦ در ﺗﻮﺳﻌﻪ آﺑﺰی ﭘﺮوری داﻧﺸﮕﺎه آزاد اﺳﻼﻣﯽ واﺣﺪ آزادﺷﻬر. ﺳﺎل 11، شماره 1، صفحات 71 تا 82.
3
خانجانی، م. وابراهیمی، ع.، 1387. نقش پساب های کشاورزی بر میزان آلودگی آب تالاب چغاخور در استان چهارمحال و بختیاری. اولین همایش ملی تالاب های ایران. 1-14 اسفند 1387. دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. 8 صفحه.
4
ﺧﯿﺮور، ن.؛ داداللهی سهراب، ع. و ﺛﻘﯿﻠﯽ، م.، 1389. ﻏﻠﻈﺖ ﻓﻠﺰات ﺳﻨﮕﯿﻦ ﻧﯿﮑﻞ، ﮐﺎدﻣﯿﻮم، ﺳﺮب و ﻣﺲ در ﺟﻠﺒﮏها و رﺳﻮﺑﺎت ﻣﻨﺎﻃﻖ ﺳﺎﺣﻠﯽ اﺳﺘﺎن ﻫﺮﻣﺰﮔﺎن (ﺑﻨﺪرﻋﺒﺎس و ﺑﻨﺪر ﻟﻨﮕﻪ). ﻣﺠﻠﻪ ﺷﯿﻼت اﯾﺮان. ﺳﺎل 20، ﺷﻤﺎره 1، صفحات 31 تا 42.
5
دادالهی، س.؛نبوی، م. و خیرو، ر.ن.، 1387. ارتباط برخی مشخصات زیست سنجی با تجمع فلزات سنگین در بافت عضله و آبشش ماهی شیربت (Barbus grypus) در رودخانه اروند رود. مجله علمی شیلات ایران. سال 17، شماره 4، صفحات 24 تا 34.
6
رئیسی، م.؛انصاری،م. و رحیمی،ا.، 1388. تعیین میزان سرب و کادمیم در گوشت چهار گونه از کپورماهیان رودخانه بهشت آباد استان چهارمحال و بختیاری و بررسی رابطه آن با سن و گونه ماهی. پژوهش های مجله علوم و فنون دریایی. شماره 3، صفحات 38 تا 47.
7
صمدی، م.؛ ساقی، م.؛ رحمانی، ع. و ترابزاده، ح.، 1388. پهنه بندی کیفی آب رودخانه دره مراد بیک همدان براساس شاخص NSFWQI و بهره گیری از سامانه اطلاعات جغرافیایی. مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی و خدمات بهداشتی درمانی همدان. دوره 16، شماره 3، صفحات 38 تا 43.
8
طهمورث پور، ا.؛ نصرآزادانی، ا. و هودجی، م.، 1388. تعیین آستانه تحمل باکتری ها به سرب، روی و کادمیوم در سه نوع فاضلاب صنعتی.محیط شناسی. سال 36، شمارة 56، صفحات 75 تا 86.
9
کریمی، م. و هاشمنیا، ن.، 1387. بررسی اثرات آلودگی آب از دیدگاه زمین پزشکی و زیست محیطی. چهارمین همایش زمین شناسی و محیط زیست.
10
کوسج، ن.؛ رحمانی، ع.؛کامرانی، ا.؛ وطاهری زاده،م.ح. وعلینیا، م.، 1392. بررسی میزان ارتباط طول بدن با میزان تجمع سرب در ماهی گلخورک والتونی (Periophthalmus waltoni) در شمال خلیج فارس. اقیانوس شناسی. سال 4، شماره 15، صفحات 1 تا 9.
11
محمد نبی زاده، س. و پورخباز، ع.،1392. بررسی تجمع فلزات سنگین کادمیوم و نیکل در بافت های ماهی زمینکن (Platycephalus indicus) در تالاب حرا. علوم و مهندسی محیط زیست. سال 1، شماره 1، صفحات 11 تا 18.
12
محوری حبیب آبادی، ع.، 1377. اندازه گیری و مقایسه فلزات سنگین در بافت های ماهی شوریده. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه شهید چمران. دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی.
13
میرسنجری،م.، 1380. بررسی اثرات آلودگی فلزات سنگین (جیوه و سرب) بر روی آبزیان دریای مازندران. چهارمین همایش کشوری بهداشت محیط. دانشگاه علوم. پزشکی یزد. صفحات736 تا 745.
14
ناصری،م.، 1384.سنجش میزان عناصر سنگین آهن، مس، روی، منیزیم، منگنز، جیوه، سرب و کادمیوم در بافت های خوراکی و غیرخوراکی ماهی کفال پشت سبز سواحل بوشهر. سمینار کارشناسی ارشد شیلات. دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی نور. دانشگاه تربیت مدرس.
15
نبوی، م.، 1385. بررسی تجمع فلزات سنگین (V,Pb,Ni,Hg,Cd) در دو گونه از کفشک ماهیان بندرعباس و بندرلنگه. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات اهواز. صفحات 73 تا 76.
16
Abdi, K., 2010. Text book of Health and diseases of Cyprinid fishes. First published. Publisher artoveah vageah. Tehran, Iran (in persian).
17
Agah, H.; Leermakers, M.; Elskens, M.; Fatemi, S.M.R. and Baeyens, W., 2009. Accumulation of trace metals in the muscle and liver tissues of five species from the Persian Gulf. Journal of Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 157, pp: 499-514.
18
Al-Yousuf, M.H.; El-Shahawi, M.S. and Al-Ghais, S.M., 2000. “Trace metals in liver, skin and muscle of (lethrinus lentjan) fish species. Relation to Body length and Sex. Sci. Total Environ. Vol. 256, pp: 87-94.
19
AOAC. 1980. Official methods of analysis, Association of official analytical chemists, INC., Arlington, Virginia, USA.
20
Atobatele, O. and Olutona, G., 2015. Distribution of three non-essential trace metals (Cadmium, Mercury and Lead) in the organs of fish from Aiba Reservoir, Iwo, Nigeria. Toxicology Reports. Vol. 2, pp: 896-903.
21
Ayse, Y., 2003. Comparison of heavy metal level of grey Mullet (Mugil cephalus L) and Sea Bream (Sparusaurata L.) caught in Iskenderun Bay. The science of the Environment. Vol. 25, No. 2, pp: 115-148.
22
Canil, M. and Atli, G., 2003. The Relationships Between heavy metal (Cd, Cr, Cu, Fe, Pb, Zn) Levels and The Size of Six Mediterranean Fish Species. Environmental Pollution. Vol. 121, pp: 129-136.
23
Chehregani, A.; Noori, M. and LariYazdi, H., 2009. Phytoremediation of heavy metal polluted soils: Screening for new accumulator plants in Angouran mine (Iran) and evaluation of removal ability. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 72, pp: 1349-1353.
24
Demirak, A.; Yilmaz, F.; Tuna, AL. and Ozdemir, N., 2006. Heavy metals in water, sediment and tissues of Leuciscus cephalus from a stream in southwestern Turkey. Chemosphere. Vol. 63, pp: 1451-1458.
25
Ekpo, K.E.; Asia, I.O.; Amayo K.O. and Jegede D.A., 2008. Determination of lead, cadmium and mercury in surrounding water and organs of some species of fish from Ikpobariver in Benin City, Nigeria. International Journal of Physical Science. Vol. 3, No.11, pp: 289-292.
26
Elder, J.F. and Collins, J.J., 1991. Freshwater mollusks as indicators of bioavailability and toxicity of metals in surface systems. Bull Environm Contam Toxicol. Vol. 122, pp: 37-39.
27
FAO. 2009. Fishery Statistics Yearbook. Catches and Landings. FAO. Rome. Vol. 74, No. 63, pp: 1759-1764.
28
Farkas, A.; Salanki, J. and Specziar, A., 2003. Age and size specific patterns of heavy metals in the organs of freshwater fish Abramis brama L. Populating a Low-contaminated site. Water Research. Vol. 37, pp: 959-964.
29
Filazi, A.; Baskaya, R. and Kum, C., 2003. Metal concentration in tissues of the Black Sea fish Mugil auratus form Sinop-Icliman, Turkey. Human and Experimental Toxicology. www. Hetjournal.com. Vol. 22, pp: 85-87.
30
Gaspic, Z.K.; Zvonaric, T.; Vrgoc, N.; Odzak, N. and Baric, A., 2002. Cadmium and Lead in selected tissues of two commercially important fish species from the Adratic sea. Water Research. 3d, pp: 5023-5028.
31
Gungordu, A. and Ozmen, M., 2011. Assessment of seasonal and sex-related variability of biomarkers in carp (Cyprinus carpio L). from Karakaya Dam Lake Turkey. Environ Toxicol Pharmacol. Vol. 31, No. 3, pp: 347-356.
32
Patrick, L., 2006. Lead toxicity, a review of the literature. part 1: Exposure. evaluation, and treatment. Altern Med Rev. Vol. 11, pp: 2-22.
33
Pazooki, J.; Ghaffar Haddadi, F. and Abtahi, B.A., 2012. Comparison of heavy metal concentrations in skin and muscle tissues of wild and cultured carp (Cyprinus carpio) in the southeastern Caspian Sea area of Iran. Environmental Sciences. Vol. 9, No. 1, pp: 51-58.
34
Pourang, N.; Dennis, J.H. and Ghoorchian, H., 2004. Tissue distributions on the roles of metallothionin, Ecotoxicology. Vol. 13, pp: 519-533.
35
Roy, D.; Ghosh, D.and Kumar Mandal, D., 2013. Cadmium induced histopathology in the olfactory epithelium of a Snakehead fish, Channa punctatus (Bloch). International Journal of Aquatic Biology. Vol. 1, No. 5, pp: 221-227.
36
Schön, E.; Bogut.; Vuković, R.; Galović, D. and Bogut, A., 2015. Janja Horvatić Distribution and age-related bioaccumulation of lead (Pb), mercury (Hg), cadmium (Cd), and arsenic (As) in tissues of common carp (Cyprinus carpio) and European catfish (Sylurus glanis) from the Buško Blato reservoir (Bosnia and Herzegovina). Journal article Chemosphere. Vol. 135, pp: 289-296.
37
Simeonov, V.; Stratis, J.A.; Samara, C.; Zachariadis, G.; Voutsa, D.; Anthemidis, A.; Sofoniou, M. and Kouimtzis, T.H., 2003. Assessment of the surface water quality in Northern Greece, Water Research. Vol. 37, p: 4119-4124.
38
Team RC, R., 2014. A language and environment for statistical computing. Vienna, Austria: R Foundation for Statistical Computing.
39
ORIGINAL_ARTICLE
اثر نانوذرات اکسیدآهن بر سیستم دفاع آنتیاکسیدانی و پراکسیداسیون چربی در بافت کبد ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio)
نانوذرات آهن با تولید رادیکالهای فعال اکسیژن منجر به استرس اکسیداتیو شده و در نتیجه فعالیت آنزیمهای آنتیاکسیدانی را تحت تاثیر قرار میدهند. هدف از این پژوهش بررسی میزان سمیت، در غلظتهای مختلف نانوذرات آهن در کبد ماهی کپور بود. بررسی تغییرات در میزان آنزیمهای آنتیاکسیدانی ناشی از نانوذرات میتواند بهعنوان شاخص استرس اکسیداتیو باشد. بدین منظور بچهماهیان کپور با طول کل 0/8±11 سانتیمتر و وزن 0/6±17 گرم در معرض غلظتهای (ppm 50،30،10،0) نانوذره آهن قرار گرفتند. نمونه برداری در روزهای 0، 1، 7 و 14 انجام شد. در این تحقیق آنزیمهای آنتیاکسیدانی سوپراکسیددیسموتاز، کاتالاز و گلوتاتیونپراکسیداز در بافت کبد و میزان پراکسیداسیون چربی (MDA) بهعنوان شاخص استرس اکسیداتیو مورد سنجش قرار گرفت. نتایج این مطالعه نشان داد که قرارگیری در معرض نانوذرات آهن منجر به افزایش معنیدار در میزان پراکسیداسیون چربی و تغییر درفعالیت آنزیمهای آنتیاکسیدانی با گذشت زمان میشود(0/5>p). تغییرات مشاهده شده در سیستم دفاع آنتیاکسیدانی در واقع، پاسخی بیولوژیک در هنگام قرار گرفتن در معرض نانوذرات اکسیدآهن است. بنابراین، پایش شاخصهای زیستی مانند آنزیمهای آنتیاکسیدانی و سطح مالوندیآلدهید میتواند بهعنوان شاخص مناسب برای سنجش استرس اکسیداتیو وارد شده به ماهی کپورمعمولی باشد.
http://www.aejournal.ir/article_87462_37d429f9ec9f2a8da79bcdb727d58034.pdf
2018-12-22
325
330
نانو ذرات اکسیدآهن
پراکسیداسیون
دفاع آنتیاکسیدانی
استرس اکسیداتیو
Cyprinus carpio
مهنا
محمدی
mohanamohamadi.m@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
مسعود
ستاری
msatari@guilan.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
اریا
باباخانی
aria_babakhani@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
سیدعلی
جوهری
joharis@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه کردستان، سنندج، ایران
AUTHOR
حسین
غفوری
mb136964@yahoo.com
5
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
فریمل، ف.، 2010. نانوذرات در چرخه آب. ترجمه خانی م.، شهاب پور، گ.، خانی، م.، 1394. انتشارات آوای قلم. 323 صفحه.
1
زرنگار، ز. و صفری، ج.، 1389. هوش مغناطیسی نانوذرات. ماهنامه فناوری نانو. سال 9، شماره 7، صفحات 23 تا 34.
2
Au, K.; Wing, L.; Song, Y.L.; Yee, K.L.; Wing, H.N.; Kwong, M.C.; Yau, C.L. and Ronald, A., 2009. Effects of iron oxide nanoparticles on cardiac differentiation of embryonic stem cells. Biochemical and biophysical research communications. Vol. 379, No. 4, pp: 898-903.
3
Avci, A.; Kaçmaz, M. and Durak, İ., 2005. Peroxidation in muscle and liver tissues from fish in a contaminated river due to a petroleum refinery industry. Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 60, No. 1, pp: 101-105.
4
Baun, A., 2008. Ecotoxicity of engineered nanoparticles to aquatic invertebrates: a brief review and recommendations for future toxicity testing. Ecotoxicology. Vol. 17, No. 5, pp: 387-395.
5
Colvin, V.L., 2003. The potential environmental impact of engineered nanomaterials. Nature biotechnology. Vol. 21, No. 10, pp: 1166-1170.
6
Cornell, R.M. and Schwertmann, U., 2006. The iron oxides: structure, properties, reactions, occurrences and uses: John Wiley & Sons.
7
Elia, A.C.; Waller, W.T. and Norton, S.J., 2002. Biochemical responses of bluegill sunfish (Lepomis macrochirus, Rafinesque) to atrazine induced oxidative stress. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 68, No. 6, pp: 809-816.
8
Farré, M.; Gajda-Schrantz, K.; Kantiani, L. and Barceló, D., 2009. Ecotoxicity and analysis of nanomaterials in the aquatic environment. Analytical and Bioanalytical Chemistry. Vol. 393, No. 1, pp: 81-95.
9
George, S.; Gardner, H.; Seng, E.; Khuan, C.; Hengky, W.; Chunyan, Y.; Fang, C.; Hay, C. and Woon, K., 2014. Differential effect of solar light in increasing the toxicity of silver and titanium dioxide nanoparticles to a fish cell line and zebrafish embryos. Environmental science & technology. Vol. 48, No. 11, pp: 6374-6382.
10
Griffitt, R.J.; Weil, R.; Hyndman, K.A.; Denslow, N.D.; Powers, K.; Taylor, D. and Barber, D.S., 2007. Exposure to copper nanoparticles causes gill injury and acute lethality in zebrafish (Danio rerio). Environmental Science & Technology. Vol. 41, No. 23, pp: 8178-8186.
11
Hao, L. and Chen, L., 2012. Oxidative stress responses in different organs of carp (Cyprinus carpio) with exposure to ZnO nanoparticles. Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 80, pp: 103-110.
12
Johnston, H.J.; Hutchison, G.R.; Christensen, F.M.; Peters, S.; Hankin, S.; Aschberger, K. and Stone, V., 2010. A critical review of the biological mechanisms underlying the in vivo and in vitro toxicity of carbon nanotubes: The contribution of physico-chemical characteristics. Nanotoxicology. Vol. 4, No. 2, pp: 207-246.
13
Klaine, S.J., 2008. Nanomaterials in the environment: behavior, fate, bioavailability, and effects. Environmental Toxicology and Chemistry. Vol. 27, No. 9, pp: 1825-1851.
14
Moore, M.N., 2006. Do nanoparticles present ecotoxicological risks for the health of the aquatic environment? Environment international. Vol. 32, No. 8, pp: 967-976.
15
Moraes, B.S.; Loro, V.L.; Pretto, A.; da Fonseca, M.B.; Menezes, C.; Marchesan, E. and de Avila, L.A., 2009. Toxicological and metabolic parameters of the teleost fish (Leporinus obtusidens) in response to commercial herbicides.
16
Navarro, E., 2008. Environmental behavior and ecotoxicity of engineered nanoparticles to algae, plants, and fungi. Ecotoxicology. Vol. 17, No. 5, pp: 372-386.
17
Oberdörster, G.1.; Sharp, Z.; Atudorei, V.; Elder, A.; Gelein, R.; Kreyling, W. and Cox, C., 2004. Translocation of inhaled ultrafine particles to the brain. Inhal Toxicol. Vol. 16, No. 6-7, pp: 437-445.
18
Regoli, F.; Bocchetti, R. and Filho, D., 2011. Spectrophotometric Assays of Antioxidants. Oxidative Stress in Aquatic Ecosystems. pp: 367-380.
19
Schmid, K. and Riediker, M., 2008. Use of nanoparticles in Swiss industry: a targeted survey. Environmental science and technology. Vol. 42, No. 7, pp: 2253-2260.
20
Scown, T.M.; Van Aerle, R. and Tyler, C.R., 2010. Review: do engineered nanoparticles pose a significant threat to the aquatic environment? Critical reviews in toxicology. Vol.40, No. 7, pp: 653-670.
21
Sun, Y.P.; Li, X.Q.; Zhang, W.X. and Wang, H.P., 2007. A method for the preparation of stable dispersion of zero valent iron nanoparticles. Colloids and Surfaces A: Physicochemical and Engineering Aspects. Vol. 308, No. 1, pp: 60-66.
22
Thierry, B.; Majewski, P.; Ngothai, Y. and Shi, Y., 2007. Preparation of monodisperse functionalised super paramagnetic nanoparticles. International Journal of Nanotechnology. Vol. 4, No. 5, pp: 523-530.
23
Viarengo, A., 1989. Heavy metals in marine invertebrates: mechanisms of regulation and toxicity at the cellular level. Rev. Aquat. Sci. Vol. 1, No. 2, pp: 295-317.
24
Ward, J.E. and Kach, D.J., 2009. Marine aggregates facilitate ingestion of nanoparticles by suspension-feeding bivalves. Marine Environmental Research. Vol. 68, No. 3, pp: 137-142.
25
Zhang, W., 2003. Nanoscale iron particles for environmental remediation: an overview. Journal of nanoparticle Research. Vol. 5, No. 3-4, pp: 323-332.
26
ORIGINAL_ARTICLE
سنجش میزان تجمع فلزات سنگین آب و رسوب قبل و بعد از پرورش ماهی دریایی (Cyprinus carpio) در محیط محصور درخلیج گرگان (شرق کانال خوزینی)
این تحقیق به منظور بررسی فلزات سنگین در آب و رسوب منطقه شرق کانال خوزینی قبل و بعد از پرورش ماهی در حصار توری در خلیج گرگان درسال 1391 الی 1392 انجام گردید. بدین منظور سه ایستگاه منطقه فعال پرورش ماهی در حصار توری، ایستگاه فعالیت پرورش ماهی خاویاری و ایستگاه شرقی به فاصله 500 متری قسمت شرقی از محل حصار توری انتخاب گردید. نمونه برداری از آب و رسوب یک بار قبل از ماهی دار نمودن حصار توری درمردادماه 1391 و یک بار در انتهای دوره پرورش درخردادماه 1392 انجام گردید. اندازه گیری فلزات سنگین در آب و رسوب شامل نیکل، سرب، آهن، کادمیوم، کروم، جیوه، روی، ارسنیک بروش اسپکتروفتومتری جذب اتمی انجام پذیرفت. نتایج نشان داد دامنه مقادیرسرب، روی و کروم در ابتدای دوره پرورش درمردادماه 1391در رسوبات به ترتیب 7/780-6/652 و 1/430-1/282 و8/180-4/554 و بیش ترین میزان فلزات سنگین مربوط به فلزآهن درمحل اجرای پروژه به مقدارppb)130) بود. درپایان دوره پرورش درخردادماه 1392دامنه مقادیرسرب، روی و کروم به ترتیب 0/00462-0/00403 و 0/0038-0/0121 و 0/00546-0/00465 میلی گرم بر کیلوگرم و مقدار آهن به میزان ppb) 204) در محل اجرای پروژه بیش ترین مقدار را نشان داد. کم ترین مقدار مربوط به جیوه به میزان کم تر از ppb) 1) در هر سه ایستگاه نمونه برداری در هر دو دوره نمونه برداری بود. مقادیر به دست آمده در تحقیق با مقادیر استاندارد سازمان بهداشت جهانی مقایسه شد و نشان داد که درخصوص آلودگی آب میزان آلودگی فلزات روی، کروم و سرب کم تر و در رسوب خلیج، غیر از آهن، سطح آلودگی فلزات سنگین اندازه گیری شده کم تر از میزان استانداردهای جهانی رسوب در پوسته زمین و رسوبات جهانی بود.
http://www.aejournal.ir/article_87470_25fa3e8ffa8f934e35a0ac40951a0ca0.pdf
2018-12-22
331
338
فلزات سنگین
آب و رسوب
روش اسپکتروفتومتری
ماهی خاویاری
کامران
عقیلی
k_aghili33@yahoo.com
1
مرکز تحقیقات ذخایر آبزیان آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش وترویج کشاورزی، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
عباسعلی
آقایی مقدم
aghaeifishery@gmail.com
2
مرکز تحقیقات ذخایر آبزیان آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش وترویج کشاورزی، گرگان، ایران
AUTHOR
اسماعیلی ساری،ع.، 1381. آلاینده ها، بهداشت و استاندارد در محیط زیست. انتشارات نقش مهر. 767 صفحه.
1
اشجع اردلان، آ.؛ ربانی، م. و معینی، س.، 1385. مقایسه فلزات سنگین (Hg, Zn, Cu, Pb, Cd) درآب، رسوب و بافت نرم دوکفه ای آنودنت تالاب انزلی (Anodonta cygnea) در دو فصل پاییز و بهار. فصلنامه پژوهش و سازندگی. شماره 78، صفحات 11 تا 22.
2
امینی رنجبر، غ. و حسین زاده صحافی، ه.، 1373 . تعیین میزان جیوه دریک گونه از کوسه ماهیان خلیج فارس (Calcharhinus dussumieri). مجله علمی شیلات ایران. شماره 2، صفحات 5 تا 16.
3
باقری، ح. و عظیمی، ع.، 1394. مطالعه پراکنش فلزات سنگین در رسوبات سطحی سواحل سی سنگان – جنوب دریای خزر. مجله اقیانوس شناسی. سال 6، شماره 21، صفحات 27 تا 36.
4
باقری، ح.؛ درویش بسطامی. ک.؛ شارمد، ت. و باقری، ز.، 1391. ارزیابی پراکنش آلودگی فلزات سنگین در خلیج گرگان. اقیانوس شناسی. سال 3، شماره 11، صفحات 65 تا 72.
5
باقری، ح.؛ شارمد، ت.؛ خیرآبادی، و.؛ درویش بسطامی، ک. و باقری، ز.، 1391. سنجش و ارزیابی آلودگی فلزات سنگین دررسوبات رودخانه گرگانرود. مجله اقیانوس شناسی. سال 2، شماره 5، صفحات 35 تا 39.
6
بندانی، غ.؛ خوشباور رستمی، ح.؛ شکرزاده لموکی، م. و نظری، ح.، 1395. بررسی فلزات سنگین (کادمیوم، سرب، کرم و روی) در آب ورسوبات سواحل گلستان. مجله بهره برداری و پرورش آبزیان. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. جلد 5، شماره 1، صفحات 25 تا 45.
7
بندانی، غ.، 1386. بررسی و مقایسه سطح فلزات سنگین در رسوب، آب و ماهیان پرمصرف حاشیه جنوبی دریای خزر در استان گلستان. طرح تحقیقاتی. مرکز تحقیقات ذخایر آبزیان آب های داخلی گرگان.
8
پری زنگنه، ع. و لاکان، ک.، 1386. بررسی غلظت فلزات سنگین در رسوبات سطحی سواحل دریای خزر در ایران. مجله آب و فاضلاب. شماره 63، صفحات 2 تا 12.
9
پورخباز، ع.ر.، 1392. تعیین فلزات سنگین و منابع انتشار آن ها در ذخیره گاه زیست کره حرا. طرح پژوهشی، سازمان حفاظت و محیط زیست، اداره کل حفاظت و محیط زیست استان هرمزگان. 97 صفحه.
10
حسن پور، م.؛ پورخباز، ا. و قربانی، ر.، 1391. اندازه گیری فلزات سنگین در آب، رسوب و بافت پرندگان وحشی در شمال شرقی دریای خزر. مجله علوم پزشکی دانشگاه مازندران. سال 22، شماره 1، صفحات 184 تا 194.
11
درویش بسطامی، ک.؛ طاهری، م.؛ باقری، ح.؛ یزدانی فشیمی، م.؛ سلطانی، ف. و حق پرست، س.، 1391. ارتباط بین غلظت برخی فلزات سنگین در رسوبات و جمعیت ماکرو بیتوزها در خلیج گرگان. محیط زیست جانوری. سال 4، شماره 4، صفحات 91 تا 101.
12
رجایی، ق.؛ حسن پور، م. و مهدی نژاد، م.ح.، 1391. غلظت فلزات سنگین در آب و رسوب خلیج گرگان در مصب گرگانرود. مجله تحقیقات نظام سلامت. سال 8، شماره 5، صفحات 748 تا 756.
13
رضوانی گیل کلائی، س.، 1386. بررسی آثار هیستوپاتولوژیک ناشی از برخی آلاینده های زیست محیطی دریای خزر روی ماهیان استخوانی شکارچی آزاد و سوف دریای خزر. گزارش نهایی. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 86 صفحه.
14
مرتضوی، م.ص.، 1379. مطالعه آلاینده های معدنی در میگوی موزی و میگوی سفید. گزارش نهایی. مرکز تحقیقات شیلاتی دریای عمان. 28 صفحه.
15
مطالعات نیدلمن. 1990. به نقل از پایگاه ملی داده های علم زمین کشور.
16
Ainolahi, F.; Safahieh, A.; Dadolahi, A. and Pakzad, S., 2009. Heavy metal concentrations in rock oyster Saccustrea cucullata from Iranian coasts of the Oman Sea. Trakia Journal of Sciences. Vol. 8, No. 1, pp: 79-86.
17
Babaei Siah Gol, H., 2001. Investigation of heavy metals in water of the western rivers of Guilan Province (Shafaroud, Korgon River, Havigh). The final report of the project, Guilan Fisheries Research Center. 54 p.
18
Cleark, R.B., 2001. Marine pollution. Oxford University Press. Madison. 1052 p.
19
De Mora, S. and Sheikholeslami, M.R., 2002. ASTP: Contaminant screening program. Final Report: Interpretation of the Caspian Sea Sediment Data. Caspian Environment Program.
20
Gibson, R.N., 1994. Impact of habitat quality and quantity on the recruitment of juvenile flat fishes. Netherlands Journal of Sea Research. Vol. 32, pp: 191-206.
21
Heath, A.G., 1987. Water pollution and fish physiology. CRC press, Inc, Florida, USA. 245 p.
22
Jalali, B. and Aghazade Moshki, M., 2006. Fish toxicity of heavy metals inwater and its importance in public health. Tehran, Man Ketab Publisher. 140 p.
23
Lepp, N.W., 1980. Metals in the environment. Vol. 2. Applied Science Publishers, London and New Jersey. 257 p.
24
Levinson, A.A., 1980. Introduction to exploration geochemistry. Applied Pub, Ltd. 924 p.
25
Matta, J.; Milad, M.; Manager, R. and Tosteson, T., 1999. Heavy metals, lipid peroxidation and cigateratoxicity in the liver of the Caribbean barracuda (Sphyraena barracuda). Biological Trace Element Research. Vol. 70, pp: 69-79.
26
Philips, D.J.H. and Rainbow, P.S., 1992. Bio-monitoring of trace aquatic contaminants. London and New York: Elsevier Applied Science. 371 p.
27
UNEP. 1999. Guidelines for monitoring chemical contaminants in the sea using marine organisms.
28
USEPA. 1986. Carcinogen Assessment Group; Ambient water quality Criteria for Arsenic and Asbestos Environmental Protection Agency, Washington DC: Off: Drinking Water, USEPA.
29
ORIGINAL_ARTICLE
اثر غلظت های تحت کشنده نانوذرات نقره و نیترات نقره بر بیان ژن HSP70 و آسیب های بافت های آبشش، کبد و روده در ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio L)
در این مطالعه بهمنظور بررسی اثرات نقره بر ماهی کپورمعمولی، ماهیان در معرض غلظتهای تحت حاد نانوذرات نقره و نیترات نقره قرار گرفتند. برای این منظور ابتدا غلظت حاد 50% و 96 ساعته برای نانوذرات نقره و نیترات نقره بهدست آمد و سپس ماهیان بهمدت 21 روز در معرض غلظتهای تحت حاد قرار (04/0 و 08/0 میلیگرم در لیتر نانوذرات نقره و 025/0 و 045/0 میلیگرم در لیتر نیترات نقره) گرفتند و شاخصهای مورد نظر اندازهگیری قرار گرفت. پس از درمعرض قرارگیری با دو شکل نقره، عوارض مختلفی در بافتها مشاهده گردید از مهمترین آنها میشود به برخواستگی اپیتلیالی، کوتاهی و ریختگی لاملاهای ثانویه آبشش، تخریب و نکروز شدن هسته و هایپرتروف شدن هپاتوسیتهای کبد و همچنین تخریب ساختار پرزهای روده و تورم آنها اشاره کرد. نتایج این مطالعه نشان داد که در معرضگذاری بلندمدت با نانوذرات نقره باعث افزایش معنیدار بیان ژن Hsp70 شد و پس از در معرض قرارگیری ماهیان کپورمعمولی با نیترات نقره نیز، ژن Hsp70 بهشدت افزایش پیدا کرد اما اختلافی بین دو ژن از نظر بیان ژن مشاهده نگردید. همچنین بیشترین تاثیرات مشاهده شده در بین بافتهای بررسی شده در این مطالعه، در کبد ماهیان در معرض قرار گرفته با دو شکل نقره و در بالاترین غلظت مشاهده گردید و اختلافی از نظر سمشناسی بین دو شکل نقره مشاهده نگردید.
http://www.aejournal.ir/article_87543_71c4d8203e2a4007a9e0d7fc4d243b9b.pdf
2018-12-22
339
350
ماهی
نانوذرات و نیترات نقره
بافت شناسی
بیان ژن
خیراله
خسروی کتولی
khosravi.kh@ut.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
علی
شعبانی
a_shabaniy@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
حامد
کلنگی میاندره
h.kolangi@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
محمد رضا
ایمانپور
mimanpour@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
ایمانی، ا.؛ سرویمغانلو، ک. و خانی، س.، 1395. آسیب شناسی نانوذره مس بر بافت کبد و فراسنجههای خونی و بیوشیمیایی بچهماهی قزلآلای رنگینکمان(Oncorhynchus mykiss) پیش و پس از یک دوره بازیابی. شماره 113، صفحات 111 تا 118.
1
رزمآرا، پ.؛ درافشان، س.؛ پیکانحریتی، ف.؛ طالبی، م. و رنجبر، م.، 1392. اثر نانوذرات نقره کلوئیدی و نیترات نقره محلول در آب بر تغییرات بافتی آبشش گربه ماهی رنگینکمان Pangasianodon hypophthalmus. مجله بومشناسی آبزیان. سال 3، شماره 3، صفحات 10 تا 18.
2
سفری،ر.ق.؛شعبانی،ع.؛رمضانپور،س.وکلنگی میاندره،ح.،1394. اثر دوزهای تحت کشنده سم اندوسولفان بر بیان ژن Hsp70 و آسیبهای بافت آبشش در تاسماهی ایرانی (Acipenser persicus Borodin, 1897). نشریه توسعه آبزیپروری. سال 9، شماره 2، صفحات 65 تا 94.
3
هدایتی،ع.؛ جهانبخشی، ع. وقادریرمازی، ف.، 1392. سمشناسی آبزیان. انتشارات دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 210 صفحه.
4
Ahearn, G.A.; Mandal, P.K. and Mandal, A., 2004. Calcium regulation in crustaceans during the molt cycle: a review and update. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 137, pp: 247–257.
5
Ahmad, I.; Pacheco, M. and Santos, M.A., 2004. Enzymatic and nonenzymatic antioxidants as an adaptation to phagocyte-induced damage in (Anguilla anguilla). following in situ harbor water exposure. Ecotoxicology and Environment Safety. Vol. 57, pp: 290-302.
6
Baalousha, M.; Manciulea, A.; Cumberland, S.; Kendall, K. and Lead, J.R. 2008. Aggregation and surface properties of iron oxide nanoparticles: influence of pH and natural organic matter. Environmental Toxicology and Chemistry. Vol. 27, No. 9, pp: 1875-1882.
7
Bajer, P.G. and Sorensen, P.W., 2010. Recruitment and abundance of an invasive fish, the common carp, is driven by its propensity to invade and reproduce in basins that experience winter-time hypoxia in interconnected lakes. Biological Invasions. Vol. 12, No. 5, pp: 1101-1112.
8
Bao, Y.; Wang, Q.; Liu, H. and Lin, Z., 2011. A small HSP group gene of bloody clam (Tegillarca granosa) involved in the immune response against vibrio parahaemolyticus and lipo polysaccaride. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 30, pp: 729-733.
9
Bauer, M.; Greenwod, S.J.; Clark, K. F.; Jackman, P. and Fairchild, W., 2013. Analysis of gene expression in Homarus americanus larvae exposed to sublethal concentration of endosulfan during metamorphosis. Comparative Biochemistry and physiology. Vol. 8, pp: 300-308.
10
Bauer, M.; Greenwod, S.J.; Clark., K. F.; Jackman, P. and Fairchild, W., 2013. Analysis of gene expression in Homarus americanus larvae exposed to sublethal concentration of endosulfan during metamorphosis. Comparative Biochemistry and physiology. Vol. 8, pp: 300-308.
11
Bilberg, K.; Hovgaard, M.B.; Besenbacher, F. and Baatrup, E., 2011. In vivo toxicity of silver nanoparticles and silver ions in zebrafish (Danio rerio). Journal of toxicology.
12
Blaser, S.A.; Scheringer, M.; MacLeod, M. and Hungerbuhler, K., 2008. Estimation of cumulative aquatic exposure and risk due to silver: Contribution of nano-functionalized plastics and textiles. Science of the Total Environment. Vol. 390, pp: 396-409.
13
Buso, D.; Post, M.; Cantalini, C.; Mulvaney, P. and Martucci, A., 2008. Gold Nanoparticle-Doped TiO2 Semiconductor Thin Films: Gas Sensing Properties. Advanced Functional Materials. Vol. 18, No. 23,
14
pp: 3843-3849.
15
Bustin, S.A.; Benes, V.; Garson, J.A.; Hellemans, J.; Huggett, J.; Kubista, M.; Mueller, R.; Nolan, T.; Pfaffl, M.W. and Shipley, G.L., 2009. The MIQE guidelines: minimum information for publication of quantitative real time PCR experiments. Clinical chemistry. Vol. 55, No. 4, pp: 611-622.
16
Cengiz, E.I., 2006. Gill and kidney histopathology in the freshwater fish Cyprinus carpio after acute exposure to deltamethrin. Environmental Toxicology and Pharmacology. Vol. 22, pp: 200-204.
17
Cengiz, E.I.; Unlu, E. and Balci, K., 2006. The histopathological effects of thiodan on the liver and gut of mosquitofish, Gambusia affinis. Journal of Envinronmental Science and Health. Vol. 36, No. 1, pp: 75-85.
18
Chan, K.M., 1995. Methalothionin: Potentital biomarker for monitoring heavy metal pollution in fish around Hong Kong. Marine Pollution Bulletin. Vol. 31, pp: 411-415.
19
Colombo, A.; Bonfanti, P.; Orsi, F. and Camatini, M., 2003. Developmental effects of endocrine disturbing chemicals in wildlife and humans. Environment Health Perspective. Vol. 101, pp: 378-384.
20
Cui, Z.; Liu, Y.; Luan, W.; Li, Q.; Wu, D. and Wang, Sh., 2010. Molecular cloning and characterization of a heat shock protein 70 gene in swimming crab (Portunus trituberculatus). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 28,
21
pp: 56-64.
22
Da Cuna, R.H.; Vazquez, G.R.; Piol, M.N.; Guerrero, N.V.; Maggese, M.C. and Nostro, F.L., 2011. Assessment of the acute toxicity of organochlorine pesticide endosulfan in Cichlasoma dimerus. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 74, pp.1056-1073.
23
Dong, M.; Zhu, L.; Shao, B.; Zhu, Sh.; Wang, J.; Xie, H.; Wang, J. and Wang, F., 2013. The effects of endosulfan on cytochrome P450 enzymes and glutathione S-transferase in zebrafish (Danio rerio) livers. Ecotoxicology and Environmental Safty. Vol. 92, pp: 1-9.
24
Dorts, J.; Silvestre, F.; Tu, H.T.; Tyberghein, A.E.; Phuong N.T. and Kestemont, P., 2009. Oxidative stress protein carbonilation and heat shock proteins in the black tiger shrimp (Penaeus monodon) following exposure to endosulfan and deltamethrin. Environmental Toxicology and Pharmacology. Vol. 28, No. 2, pp: 302-310.
25
Duffy, L.K.; Scofiled, T.; Patton, M. and Bowyer, R.T., 1999. Comparative baseline levels of mercury, hsp70 and hsp90 in subsistence fish from the Yukon- Kushkokwim delta region of Alaska. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 124, No. 2, pp: 181-186.
26
Fanta, E.; Rios, F.S.A.; Romão, S.; Vianna, A.C.C. and Freiberger, S., 2003. Histopathology of the fish Corydoras paleatus contaminated with sublethal levels of organophosphorus in water and food. Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 54, No. 2, pp: 119-130.
27
Fu, D.; Chen, J.; Zhang, Y. and Yu, Z., 2011. Cloning and expression of a heat shock protein 90 gene in the haemocytes of Crassostrea hongkongensis under osmotic stress and bacterial challenge. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 31, pp: 118-125.
28
Galloway, T.; Lewis, C.; Dolciotti, I.; Johnston, B.D.; Moger, J. and Regoli. F., 2010. Sublethal toxicity of nano titanium dioxide and carbon nanotubes in a sediment dwelling marine polychaete. Environmental Pollution.
29
Vol. 158, pp: 1748-1755.
30
Ghorshi Nezhad, M.R.; Zolfani, S.H.; Moztarzadeh, F.; Zavadskas, E.K. and Bahrami, M., 2015. Planning the priority of high tech industries based on Swara-Waspas methodology: The case of the nanotechnology industry in Iran. Economic Research-Ekonomska Istraživanja. Vol. 28, No. 1, pp: 1111-1137.
31
Gottschalk, F.; Sonderer, T.; Scholz, R.W. and Nowack, B., 2009. Modeled environmental concentrations of engineered nanomaterials (TiO2, ZnO, Ag, CNT, fullerenes) for different regions. Environment science technology.
32
Vol. 43, pp: 9216–9222.
33
Griffitt, R.J.; Brown‐Peterson, N.J.; Savin, D.A; Manning, C.S.; Boube, I.; Ryan, R. and Brouwer, M., 2012. Effects of chronic nanoparticulate silver exposure to adult and juvenile sheepshead minnows (Cyprinodon variegatus). Environmental Toxicology and Chemisty. Vol. 31, pp: 160–167.
34
Griffitt, R.J.; Weil, R.; Hyndman, K.A,; Denslow, N.D.; Powers, K.; Taylor, D. and Barber, D.S., 2007. Exposure to copper nanoparticles causes gill injury and acute lethality in zebrafish (Danio rerio). Environment Science Technology. Vol. 41, pp: 8178-8186.
35
Grillo, R.: Rosa, A.H. and Fraceto, L.F., 2015. Engineered nanoparticles and organic matter: a review of the state of the art. Chemosphere. Vol. 119, pp: 608-619.
36
Hao, L.; Chen, L.; Hao, J. and Zhong, N., 2013. Bioaccumulation and sub-acute toxicity of zinc oxide nanoparticles in juvenile carp (Cyprinus carpio): A comparative study with its bulk counterparts. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 91, pp: 52-60.
37
Jayakumar, P. and Paul, V.I., 2006. Pattern of cadmium accumulation in selected tissues of the cat fish (Clarias batrachus) exposed to sublethal concentration of cadmium chloride. Veterinarski Arhive. Vol. 76, No. 2, pp. 167-177.
38
Jester, D. B., 1974. Life history, ecology, and management of the carp, Cyprinus carpio Linnaeus. Elephant Butte Lake. New Mexico State University, Research Report. Vol. 273, 80 p.
39
Jing, J.; Liu, H.; Chen, H.; Hu, S.; Xiao, K. and Ma, X., 2013. Acute effect of copper and cadmium exposure on the expression of heat shock protein 70 in the Cyprinidae fish (Tanichthys albonubes). Chemosphere. Vol. 91, No. 8, pp: 1113-1122.
40
Kashiwada, S., 2006. Distribution of nanoparticles in the see-through medaka (Oryzias latipes). Environmental Health Perspective. Vol. 114, 1697 p.
41
Katuli, K.K.; Massarsky, A.; Hadadi, A. and Pourmehran, Z., 2014a. Silver nanoparticles inhibit the gill Na+/K+-ATPase and erythrocyte AChE activities and induce the stress response in adult zebrafish (Danio rerio). Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 106, pp: 173-180.
42
Katuli, K.K.; Amiri, B.M.; Massarsky, A. and Yelghi, S., 2014b. Impact of a short-term diazinon exposure on the osmoregulation potentiality of Caspian roach (Rutilus rutilus) fingerlings. Chemosphere. Vol. 108, pp: 396-404.
43
Kenkel, C.D.; Sheridan, C.; Leal., M.C.; Bhagooli, R.; Castillo, K.D.; Kurata., N.; McGinty, E.; Goulet, T.L. and Matz, M.V., 2014. Diagnostic gene expression biomarkers of coral thermal stress. Marine Ecology Research. Vol. 14, pp: 667-6780.
44
Khosravi-Katuli, K.; Prato, E.; Lofrano, G.; Guida, M.; Vale, G. and Libralato, G., 2017. Effects of nanoparticles in species of aquaculture interest. Environmental Science and Pollution Research. pp: 1-21.
45
Kim, J.; Park, Y.; Yoon, T.H.; Yoon, C.S. and Choi, K., 2010. Phototoxicity of CdSe/ ZnSe quantum dotswith surface coatings of 3-mercaptopropionic acid or tri-n octylphosphine oxide/gum arabic in Daphnia magna under environmentally relevant UV-B light. Aquatic Toxicology. Vol. 97, pp:116-124.
46
Kolangi Miandare, H.; Jafari, O. and Akbarzadeh, A., 2015. The transcription of Hypoxia-inducible factors (hif-1, hif-2) during normal development of Beluga sturgeon (Huso huso Linnaeus, 1758). Journal of Aquatic Ecology. Vol. 4, No. 4, pp: 87-80.
47
Lee, S.M.; Lee, S.B.; Park, C.H. and Choi, J. 2006. Expression of heat shock protein and hemoglobin genes in (Chironomus tentas) larvae exposed to various environmental pollutants: a potential biomarker of fresh water monitoring. Chemosphere. Vol. 65, pp: 1074-1081.
48
Li, Z.H.; Chen, L.; Wu, Y.H.; Li, P.; Li, Y.F. and Ni, Z.H., 2014. Effects of mercury on oxidative stress and gene expression of potential biomarkers in larvae of the Chinese rare minnow Gobiocypris rarus. Archives of environmental contamination and toxicology. Vol. 67, No. 2, pp: 245-251.
49
Lovern, S.B. and Klaper, R., 2006. Daphnia magna mortality when exposed to titanium dioxide and fullerene (C60) nanoparticles. Environmental toxicology and chemistry.Vol. 25, No. 4, pp: 1132-1137.
50
Madhumathi, K.; Kumar, P.S.; Abhilash, S.; Sreeja, V.; Tamura, H.; Manzoor, K. and Jayakumar, R., 2010. Development of novel chitin/nanosilver composite scaffolds for wound dressing applications. Journal of Materials Science: Materials in Medicine. Vol. 21, No. 2, pp: 807-813.
51
Mishra, A.; Kaushik, N.K.; Sardar, M. and Sahal, D., 2013. Evaluation of antiplasmodial activity of green synthesized silver nanoparticles. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. Vol.7, No.111, pp: 713-718.
52
Nair, K.K.; Kiremidjian, A.S. and Law, K.H., 2006. Time series-based damage detection and localization algorithm with application to the ASCE benchmark structure. Journal of Sound and Vibration. Vol. 291, No. 1, pp: 349-368.
53
Nallamuthu, I.; Parthasarathi, A. Khanum, F., 2013. Thymoquinone-loaded PLGA nanoparticles: antioxidant and anti-microbial properties.
54
Negro, C.L. 2015. Histopathological effects of endusolfan to hepatopancreas, gills and ovary of the fresh water crab Zilchiopsis collastinensis (Decapoda: Trichodactylidae). Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 113,
55
pp. 87-94.
56
Osborne, O.J.; Lin, S.; Chang, C.H.; Ji, Z.; Yu, X.; Wang, X.; Lin, S.; Xia, T. and Nel, A.E., 2015. Organ-specific and size-dependent Ag nanoparticle toxicity in gills and intestines of adult zebrafish. ACS nano. Vol. 9, pp: 9573-9584.
57
Pandey, S.; Parvaz, S.; Sayeed, I.; Haque, R.; Bin-Hafeez, B. and Raisuddin, S., 2003. Biomarker of oxidative stress: a comparative study of river Yamuna fish Wallage attu. The Science of the Total Environmental. Vol. 309, pp: 105-115.
58
Rajeshkumar, S.; Mini, J. and Munuswamy, N., 2013. Effects of heavy metals on antioxidants and expression of HSP70 in different tissues of Milk fish (Chanos chanos) of Kaattuppalli Island, Chennai, India. Ecotoxicology and Environ Safety. Vol. 98, pp: 8-18.
59
Rhee, J.S.; Raisuddin, Sh.; Lee, K.W.; Seo, J.S.; Ki, J.S. and Kim, I.Ch., 2009. Heat shock protein (Hsp) gene responses of intertidal copepod (Tigriopus japonicus) to environmental toxicants. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 149, pp:104-112.
60
Ribeiro, F.; Gallego-Urrea, J.A.; Jurkschat, K.; Crossley, A.; Hassellöv, M.; Taylor, C.; Soares, A.M. and Loureiro, S., 2014. Silver nanoparticles and silver nitrate induce high toxicity to Pseudokirchneriella subcapitata, Daphnia magna and Danio rerio. Science of the Total Environment. Vol. 466, pp: 232-241.
61
Ringwood, A.H.; Khambhammettu, S.; Santiago, P.; Bealer, E.; Stogner, M.; Collins, J. and Gonsalves,
62
K.E., 2005. Characterization, imaging and degradation studies of quantum dots in aquatic organisms. In MRS Proceedings. Cambridge University Press. Vol. 895, pp. 0895-G04.
63
Roberts, R., 1989. Fish Pathology, second ed. 467 p.
64
Rose, W.L.; Nisbet, R.M.; Green, P.G.; Norris, S.; Fan, T.; Smith, E.H.; Cherr, G.N. and Anderson, S.L., 2006. Using an integrated approach to link biomarker responses and physiological stress to growth impairment of cadmium exposed larval topsmelt. Aquatic Toxicology. Vol. 80, pp.298-308.
65
Rupik., W.; Jaslik, K.; Bembenek, J. and Wildlak. W., 2011. The expression patterns of heat shock proteins and their rote during vertebrate's development. Comparative Biochemistry Physiology. Vol. 159, pp: 349-366.
66
Schlesinger, M.J.; Santoro, M.G. and Garaci, E., 2012. Stress proteins: induction and function. Springer Science & Business Media. Vol. 259, pp: 1309-1311.
67
Schmidt, C.W., 2009. Nanotechnology-related environmental, health and safety research: examining the national strategy. Environmental Health Perspectives. Vol. 117, No. 4, pp: A158-A161.
68
Scown, T.M.; Santos, E.M.; Johnston, B.D.; Gaiser, B.; Baalousha, M.; Mitov, S. and Aerle, R., 2010. Effects of aqueous exposure to silver nanoparticles of different sizes in rainbow trout. Toxicological Sciences. Vol. 115, No. 2, pp: 521-534.
69
Smith, C.J.; Shaw, B.J. and Handy, R.D., 2007. Toxicity of single walled carbon nanotubes to rainbow trout, (Oncorhynchus mykiss): respiratory toxicity, organ pathologies, and other physiological effects. Aquatic Toxicology. Vol. 82, No. 2, pp: 94-109.
70
Song, L.; Vijver, M.G.; Peijnenburg, W.J.; Galloway, T.S. and Tyler, C.R., 2015. A comparative analysis on the in vivo toxicity of copper nanoparticles in three species of freshwater fish. Chemosphere. Vol. 139, pp: 181-189.
71
Sparks, D.L., 1995. Sorption phenomena in soils. Environmental soil chemistry. pp: 99-139.
72
Stehr, C.M.; Myers, M.S.; Johnson, L.L.; Spencer, S. and Stein, J.E., 2004. Toxicopathic liver lesions in English sole and chemical contaminant exposure in Vancouver Harbour, Canada Marine Environment. Research. Vol. 4, pp: 55-74.
73
Tedeschi, J.N.; Kennington, W.J.; Berry, O.; Whiting, S.; Meekan, M. and Mitchell, N.J., 2015. Increased expression of Hsp70 and Hsp90 mRNA as biomarkers of thermal stress loggerhead turtle embryos (Caretta caretta). Journal of thermal biology. Vol. 47, pp: 42-50.
74
Völker, C.; Kämpken, I.; Boedicker, C.; Oehlmann, J. and Oetken, M., 2015. Toxicity of silver nanoparticles and ionic silver: comparison of adverse effects and potential toxicity mechanisms in the freshwater clam Sphaerium corneum. Nanotoxicology. Vol. 9, No. 6, pp: 677-685.
75
Waisberg, M.; Joseph, P.; Hale, B. and Beyersmann, D., 2003. Molecular and cellular mechanisms of cadmium. Toxicology. Vol. 192, pp: 95-117.
76
Wilkinson, R.J.; Porter, M.; Woolcott, H.; Longland, R. and Carragher, J.F., 2006. Effects of aquaculture related stressors and nutritional restriction on circulating growth factors (GH, IGF-I and IGF-II) in Atlantic salmon and rainbow trout. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology. Vol. 145, No. 2, pp: 214-224.
77
Williams, D.; Amman, M.; Autrup, H.; Bridges, J.; Cassee, F.; Donaldson, K.; Fattal, E.; Janssen, C.; De Jong, W.; Jung, T.; Marty, J.P. and Rydzynski, K., 2005. The appropriateness of existing methodologies to assess the potential risks associated with engineered and adventitious products of nanotechnologies. In: risks Scoeanih, editor: European commission health and consumer protection directorate general. pp: 1-78.
78
Wu, Y.; Zhou, Q.; Li, H.; Liu, W.; Wang, T. and Jiang, G., 2010. Effects of silver nanoparticles on the development and histopathology biomarkers of Japanese medaka (Oryzias latipes) using the partial-life test. Aquatic Toxicology. Vol. 100, pp: 160-167.
79
Xing, H.; Li, S.; Wang, X.; Gao, X.; Xu, S. and Wang, X., 2013. Effects of atrazine and chlorpyrifos on the mRNA levels of HSP70 and HSC70 in the liver, brain, kidney and gill of common carp (Cyprinus carpio L.). Chemosphere. Vol. 90, No. 3, pp: 910-916.
80
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر منابع مختلف کربن بر جمعیت باکتریایی و مشخصات بافت سنجی روده کپورمعمولی (Cyprinus carpio) درسیستم بیوفلاک
دراین تحقیق، تاثیر منابع مختلف کربن (ملاس چغندر و پودر تفاله هویج) بر تعداد کل باکتری ها و تغییرات بافتی روده ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) در سیستم بیوفلاک مورد بررسی قرار گرفت. تعداد 243 قطعه ماهی با میانگین وزنی (8/1±16/2)گرم تهیه و با تراکم 9 عدد در هر آکواریوم50 لیتری به مدت 8 هفته تیمار شدند. درمجموع 9 تیمار آزمایشی شامل تیمار1 (بدون سیستم بیوفلاک با 100% جیره روزانه) و 8 تیمار در سیستم بیوفلاک شامل تیمار 2 (100%)، تیمار 3 (75%)، تیمار 4 (50%) و تیمار 5 (25%) جیره روزانه + منبع کربنی پودر تفاله هویج و تیمار 6 (100%)، تیمار 7 (75%)، تیمار 8 (50%)، تیمار 9 (25%) جیره روزانه + منبع کربنی ملاس چغندرقند مورد ارزیابی قرار گرفتند.در پایان آزمایش جمعیت باکتریایی روده و محیط پرورشی و نیز مشخصات بافت سنجی بررسی شدند. نتایج به دست آمده نشان داد که تفاوت معنی داری (0/05>p) در تعداد باکتری های روده و هم چنین آب محیط پرورش بین تیمارهای بیوفلاک و تیمار شاهد وجود دارد به طوری که بیش ترین تعداد باکتری های روده در تیمار 5 (LogCFU/g 7/7±0/008) و کم ترین آن (LogCFU/g 6/08±0/018) در تیمار شاهد است و بیش ترین تعداد باکتری های محیط پرورش در تیمار 6(LogCFU/ml 6/18±0/023)و کم ترین در تیمار شاهد(LogCFU/ ml 4/18±0/03) به دست آمد. افزایش معنی دار (0/05>p) طول پرزهای روده در تیمار 3 مشاهده شد. استفاده از سیستم بیوفلاک و افزودن منبع کربنی سبب تغییر در جمعیت کل باکتری های آب محیط پرورش،روده و تغییراتی از جمله افزایش طول پرز، سلول هایجامی وسلول های لوکوسیت دربافت روده گردید.
http://www.aejournal.ir/article_87592_4ea41fffe85c205f57c320113799fab5.pdf
2018-12-22
351
360
شمارش باکتریایی
بافت سنجی روده
کپورمعمولی
بیوفلاک
سعید
اسداله نصرآبادی
asadollah107@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
AUTHOR
پریتا
کوچنین
pkochanian@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
نصرالله
محبوبی صوفیانی
soofiani@iut.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
وحید
یاوری
yavarivahid@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
AUTHOR
امیر حسین
جلالی
ahjalali2002@gmail.com
5
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
Abid, A.; Davies, S.J.; Wines, P.; Emery, M.; Castex, M.; Gioacchini, G.; Carnevali, O.; Bickerdike, R.; Romero, J. and Merrifield, D.L., 2013. Dietary symbiotic application modulates Atlantic salmon (Salmon salar) intestinal microbial communities and intestinal immunity. Fish Shellfish Immunol. Vol. 22, pp: 1-9.
1
Aguilera-Rivera, D.; Prieto-Davó, A.; Escalante, K.; Chávez, C.; Cuzon, G. and Gaxiola, G., 2014. Probiotic effect of FLOC on Vibrios in the pacific white shrimp Litopenaeus vannamei. Aquaculture. Vol. 424, pp: 215-219.
2
AL Abdulhadi, H.A., 2005. Some comparative histological studies on alimentary tract of Tilapia fish (TilaplaspilurusI) and Sea Bream (Myliocuvieri). Egypt J Aquat Res. Vol. 31, No. 1, pp: 387-396.
3
Anand, P.S.S.; Kohli, M.P.S.; Kumar, S.; Sundaray, J.K.; Roy, S.D.; Venkateshwarlu, G.; Sinha, A, and Pailan, G.H., 2014. Effect of dietary, supplementation of biofloc on growth performance and digestive enzyme activities in Penaeus monodon. Aquaculture. Vol. 418, pp: 108-115.
4
Anand, P.S.S.; Kumar, S.; Panigrahi, A.; Ghoshal, T.K.; Dayal, J.S.; Biswas, G.; Sundaray, J.K.; De, D.; Raja, R.A. and Deo, A.D., 2013. Effects of C: N ratio and substrate integration on periphyton biomass, microbial dynamics and growth of Penaeus monodon juveniles. Aquaculture International. Vol. 21, No. 2, pp: 511-524.
5
AOAC (Association of Official Analytical Chemists). 1990. Official Methods of Analysis AOAC, Washington, DC. 1963 P.
6
Asaduzzaman, M.; Wahab, M.A.; Verdegem, M.C.J.; Huque, S.; Salam, M.A. and Azim, M.E., 2008. C/N ratio control and substrate addition for periphyton development jointly enhance freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii production in ponds. Aquaculture. Vol. 280, pp: 117-123.
7
Avnimelech, Y., 1999. Carbon/nitrogen ratio as a control element in aquaculture. Systems. Aquaculture. Vol. 176, pp: 227-235.
8
Avnimelech, Y., 2009. Biofloc Technology , A Practical Guide Book.The World Aquaculture Society, Baton Rouge, Louisiana, United States. 182 P.
9
Azim, M.E. and Little, D.C., 2008. The biofloc technology (BFT) in indoor tanks: water quality biofloc composition, and growth and welfare of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture. Vol. 283, No. 1, pp: 29-35.
10
Briones, A. and Raskin, L., 2003. Diversity and dynamics of microbial communities in engineering environments and their implications for process stability. Curr Opin Biotechnol. Vol. 14, pp: 270-276.
11
Burford, M.A.; Thompson, P.J.; McIntosh, R.P.; Bauman, R.H. and Pearson, D.C., 2004. The contribution of flocculated material to shrimp (Litopenaeus vannamei) nutrition in a high intensity, zero exchange system. Aquaculture. Vol. 232, pp: 525-537.
12
Crab, R.; Defoirdt, T.; Bossier, P. and Verstraete, W., 2012. Biofloc technology inaquaculture: beneficial effects and future challenges. Aquaculture. pp: 356-357.
13
Crab, R.; Avnimelech, Y.; Defoirdt, T.; Bossier, P. and Verstraete, W., 2007. Nitrogen removal techniques in aquaculture for a sustainable production. Aquaculture. Vol. 270, pp: 1-14.
14
Crab, R.; Chielens, B.; Wille, M.; Bossier, P. and Verstraete, W., 2010a. The effect of different carbon sources on the nutritional value of bioflocs, a feed for Macrobrachium rosenbergii postlarvae. Aquacult Res.
15
Vol. 41, pp: 559-567.
16
Crab, R.; Kochva, M.; Verstraete, W. and Avnimelech, Y., 2009. Bio flocs technology applicationin over-wintering of tilapia. Aquacult. Eng. Vol. 40, pp: 105-112.
17
Crab, R.; Lambert, A.; Defoirdt, T.; Bossier, P. and Verstraete, W., 2010b. The application of bioflocs technology to protect brine shrimp (Artemia franciscana) from pathogenic Vibrio harveyi. J Appl Microbiol. Vol. 109, No. 5, pp:1643-1649.
18
Del'Duca, A.; Cesar, D.E. and Abreu, P.C., 2015. Bacterial community of pond's water, sediment and in the guts of tilapia (Oreochromis niloticus) juveniles characterized by fluorescent in situ hybridization technique. Aquac. Res. Vol. 46, No. 3, pp: 707-715.
19
De Schryver, P. and Verstraete, W., 2009. Nitrogen removal fromaquaculture pond water by heterotrophic nitrogen assimilation in lab-scale sequencing batch reactors. Bioresour Technol. Vol. 100, No. 3, pp: 1162-1167.
20
De Schryver, P. and Vadstein, O., 2014. Ecological theory as a foundation to control pathogenic invasion in aquaculture. ISME J. pp: 1-9.
21
Ebeling, J.M.; Timmons, M.B. and Bisogni, J.J., 2006. Engineering analysis of the stoichiometry of photoautotrophic, autotrophic, and heterotrophic removal of ammonia-nitrogen in aquaculture systems. Aquaculture. Vol. 257, pp: 346-358.
22
Ellis, A.E., 2001. Innate host defense mechanisms of fish against viruses and bacteria. Dev. Comp. Immunol. Vol. 25, pp: 827-839.
23
Ferreira, G.S.; Bolívar, N.C.; Pereira, S.A.; Guertler, C.; Vieira, F.d.N.; Mouriño, J.L.P. and Seiffert, W.Q., 2015. Microbial biofloc as source of probiotic bacteria for the culture of Litopenaeus vannamei. Aquaculture. Vol. 448, pp: 273-279.
24
FAO (Food and Agriculture Organization of the United Nations). 2016. The State of World Fisheries and Aquaculture, Contributing to food security and nutrition for all. Room. Available at http://www.fao.org. 191 p.
25
Gisber, E.; Castillo, M.; Skalli, A.; Andree, K.B. and Badiola, I., 2013. Bacillus cereus var. toyoi promotes growth, affects the histological organization and microbiota of the intestinal mucosa in rainbow trout fingerlings. J Animal Sci. Vol. 91, No. 27, pp: 66-74.
26
Goldburg, R.; Elliot, M. and Naylor, R.L., 2001. Marine Aquaculture in the United States. Environmental Impacts and Policy Options; Pew Oceans Commission: Arlington, VA.
27
Hargreaves, J.A., 2013. Biofloc Production Systems for Aquaculture. 4503. SRAC Publication. pp: 1-12.
28
Hargreaves, J.A., 2006. Photosynthetic suspended-growth systems in aquaculture. Aquacult. Eng. Vol. 34, pp: 344-363.
29
Hapsari, F., 2016. The effect of fermented and non fermented biofloc inoculated with bacterium Bacillus cereus for catfish (Clarias gariepinus) juveniles. AACL Bioflux. Vol. 9, No. 2, pp: 334-339.
30
Hari, B.; Kurup, B.M.; Varghese, J.T.; Schrama, J.W. and Verdegem, M.C.J., 2004. Effects of carbohydrate addition on production in extensive shrimp culture systems. Aquaculture. Vol. 241, pp: 179-194.
31
Hari, B.; MadhusoodanaKurup, B.; Varghese, J.T.; Schrama, J.W. and Verdegem, M.C.J., 2006. The effect of carbohydrate addition on water quality and the nitrogen budget in extensive shrimp culture systems. Aquaculture. Vol. 252, pp: 248-263.
32
Hpstins, B.; Lara, G.; Decamp, O.; Cersar, E.D. and Jr, W.W., 2017. Efficacy and variations in bacterial ensity in the gut of Litopenaeus vannamei reared in a BFT system and in clear water supplemented with a ommercial probiotic mixture. Aquaculture. Vol. 480, pp: 58-64.
33
Hollender, J.; van der Krol, D.; Kornberger, L.; Gierden E. and Dott, W., 2002. Effect of different carbon sources on the enhanced biological phosphorus removal in a sequencing batch reactor. World J. Microbiol. Biotechnol. Vol.18, pp: 355-360.
34
Hu, X.; Cao, Y.; Wen, G.; Zhang, X.; Xu, Y.; Xu, W.; Xu, Y. and Li, Z., 2016. Effect of combined use of Bacillus and molasses on microbial communities in shrimp cultural enclosure systems. doi:10.1111/are.13101
35
Jordanoska, L.V. and Kostoski, G., 2006. Histopathological Analysis of liver in fish in Reservoir Trebenista Natura Croatica. Vol. 14, No. 2, pp: 147-153.
36
Ju, Z.Y.; Forster, I.; Conquest, L.; Dominy, W.; Kuo, W.C. and Horgen, F.D., 2008. Determination of microbial community structures of shrimp floc cultures by biomarkers and analysis of floc amino acid profiles Aquacult Res. Vol. 39, pp: 118-133.
37
Kamilya, D.; Debbarma, M.; Pal, P.; Kheti, B.; Sarkar, S. and Singh, S.T., 2017. Biofloc technology application in indoor culture of Labeo rohita (Hamilton, 1822) fingerlings: The effects on inorganic nitrogen control, growth and immunity. Chimospher. pp: 8-14.
38
Karim, G., 2003. Microbial tests in Foods. Univ. of Tehran. 4 th edit. 517 p.
39
Mahanand, S.S.; Moulick, S. and Srinivasa, R., 2013. Water quality of Rohu, Labeorohita, in a biofloc system. J. Appl. Aquacult. Vol. 25, pp: 121-131.
40
Merrifield, D.L.; Harper, G.M.; Dimitroglou, A.; Ringø, E. and Davies, S.J., 2010. Possible influence of probiotic adhesion to intestinal mucosa on the activity and morphology of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) enterocytes. Aquac Res. Vol. 46, No. 126, pp: 68-72.
41
Naylor, R.L.; Goldburg, R.J.; Primavera, J.H.; Kautsky, N.; Beveridge, M.C.M.; Clay, J.; Folke, C.; Lubchenco, J.; Mooney, H. and Troell, M., 2000. Effect of aquaculture on world fishsupplies. Nature. Vol. 405, pp: 1017-1024.
42
Noga, E.J., 1995. Fish Diseases: Diagnosis and Treatment. Mosby Electronic and Walsworth publishing Co. pp: 94-199.
43
Oehmen, A.; Yuan, Z.; Blackall, L.L. and Keller, J., 2004. Short-term effects of carbon source on the competition of polyphosphate accumulating organisms and glycogen accumulating organisms. Water Science and Technology. Vol. 50, pp: 139-144.
44
Piedrahita, R.H., 2003. Reducing the potential environmental impact of tank aquacul-ture effluents through intensification and recirculation. Aquaculture. Vol. 226, pp: 35-44.
45
Picchietti, S.; Mazzini, M.; Taddei, A.R.; Renna, R., Fausto, A.M.; Mulero, V.; Carnevali, O.; Cresci, A. and Abelli, L., 2007. Effects of administration of probiotic strains on GALT of larval gilthead seabream: immunohistochemical and ultrastructural studies. Fish Shell fish Immunol. Vol. 22, pp: 57-67.
46
Picchietti, S.; Fausto, A.M.; Randelli, E.; Carnevali, O.; Taddei, A.R.; Buonocore, F.; Scapigliati, G. and Abelli, L.,2009. Early treatment with Lactobacillus delbrueckii strain induces an increase in intestinal T-cells and granulocytes and modulates immune-related genes of larval Dicentrarchus labrax (L.). Fish Shellfish Immunol.
47
Vol. 26, pp: 368-76.
48
Qin, Y.; Hou, J.; Deng, M.; Liu, Q.S.; Wu, C.W.; Ji, Y.J. and He, X.G., 2016. Bacterial abundance anddiversity in pond water supplied with different feeds. Scientific Reports. Vol. 6, 35232 p.
49
Racz, L.A.; Datta, T. and Goel, R., 2010. Effect of organic carbon on ammonia oxidizing bacteria in a mixed culture. Bioresource Technol. Vol. 101, pp: 6454-6460.
50
Ringo, E. and Strom, E., 1994. Intestinal microflora of Arcticcharr.Salvelinusalpinus) (L.I.). The gastrointestinal microflora of free-living fish, and theeffect of diet and salinity on Intestinal microflora. Aquacult. Fish. Manage. Vol. 25, pp: 623-629.
51
Saritha, T., 2009. Development of innovative low cost larvi culture technologies of the giant freshwater prawn, Macrobrachium rosenbergii (de Man). PhD. Thesis, Cochin University of Science and Technology, India.
52
Standen, B.T.; Rawling, M.D.; Davies, S.J.; Castex, M. F.; Oey, A.; Gioacchini, G.; Carnevali, O. and Merrifield, D.L.,2013. Probiotic Pediococcus cidilactici modulates both localised intestinal- and peripheral- immunity in tilapia (Oreochromis niloticus). Fish Shellfish Immun. Vol. 35, pp: 1097-1104.
53
Tapia-Paniagua, S.; Lobo, C.; Moreno-Ventas, X.; Banda, I.G.D.L.; Moriñigo, M.A. and Varghese, J.T., 2007. Carbon/nitrogen ratio optimization and periphyton development on the production and sustainability of Penaeusmonodon (fabricius) in extensive culture system. PhD thesis, Cochin University of Science and Technology, Cochin, India.
54
Vander Oost, R.; Beyer, J. and Vermeulen, N., 2007. Fish bioaccumulation and biomarkers in environmental risk assessment: a review. Environ. Toxicol. Pharmacol. Vol. 68, pp: 603-621.
55
Wei, Y.F.; Liao, S.A. and Wang, A.L., 2016. The effect of different carbon sources on the nutritional composition, microbial community and structure of bioflocs. Aquaculture. Vol. 465, pp: 88-93.
56
Yang, S.P. and Qiu, D.Q., 2006. Water quality in the high density shrimp culturing ponds. Fisheries Science. Vol. 25, No. 9, pp: 459-462.
57
Zhao, Z.G.; Xu, Q.Y.; Luo, L.; Yin, J.S. and Wang, C.A., 2013. Effect ofadding carbon source on growth of fish and water quality inSongpu mirror carp (Cyprinus specularis Songpu) pond.J. Northeast Agric. Univ. Vol. 44, pp: 105-112 (in Chinese withEnglish abstract).
58
ORIGINAL_ARTICLE
انعطافپذیری ریختی ماهی سفید رودخانهای (Squalius turcicus De Filippi, 1865) در جنوب شرقی حوضه خزر با استفاده از ریختسنجی هندسی
بهمنظور بررسی تفاوتهای شکل بدنی در بین جمعیتهای ماهی سفید رودخانهای De Filippi, 1865Squalius turcicus در رودخانههای تجن، هراز، نکارود، بابلرود و نور از بخش شرقی حوضه خزر تعداد 264 قطعه نمونه بهوسیله تور گوشگیر و ساچوک در طی سالهای 1388-1389 صید گردید. نمونهها پس از بیهوشی در محلول گلمیخک و تثبیت در فرمالین 10 درصد خنثی برای ادامه مطالعه به آزمایشگاه ماهیشناسی دانشگاه صنعتی اصفهان منتقل شدند. جهت مطالعه تنوع شکل بدنی براساس روش ریختسنجی هندسی، تعداد 13 نقطه لندمارک با استفاده از نرمافزار TpsDig2 بر روی تصاویر دوبعدی تهیه شده از سمت چپ نمونه ها، تعریف و رقومی گردید. دادههای رقومی پس از آنالیز پروکراست (GPA)، برای بررسی تنوع شکلبدنی با استفاده از آنالیزهایی چندمتغیره از قیبل تجزیه به مولفههای اصلی (PCA)، تحلیل همبستگی کانونی(CVA) و تحلیل خوشه ای مورد تحلیل قرار گرفتند و نیز الگوهای تغییر شکل هر جمعیت نسبت به شکل اجماع (Consensus) در شبکه تغییر شکل مصورسازی گردید. نتایج حاصل از این مطالعه جمعیتهای بابلرود و هراز را جدا از بقیه جمعیتها نشان داد. همچنین عمده تفاوتهای شکل بدنی در جمعیت های مورد مطالعه مربوط به موقعیت دهان، ارتفاع بدن، موقعیت بالههای سینهای و مخرجی میباشد.
http://www.aejournal.ir/article_87670_3f9c45f833035dc535eb81e17ddc8012.pdf
2018-12-22
361
366
PCA
لندمارک
آنالیز پروکراست
consensus
عطا
مولودی صالح
atta.mouludisaleh@ut.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران، صندوق پستی: 83111-84156
AUTHOR
یزدان
کیوانی
keivany@iut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران، صندوق پستی: 83111-84156
LEAD_AUTHOR
سید امیر حسین
جلالی
sahjalali@cc.iut.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران، صندوق پستی: 83111-84156
AUTHOR
مظاهر
زمانی
mazaher.zamani@na.iut.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران، صندوق پستی: 83111-84156
AUTHOR
جعفریکناری، س.؛ رحمانی، ح.؛ رحیمی، ق. و فرهادی؛ ا.، 1394. تعیین تنوع ریختی جمعیتهای تالابی و رودخانهای ماهی مخرج لولهای (Rhodeus amarus) به دو روش سنتی و هندسی. نشریه پژوهشهای ماهیشناسی کاربردی. سال 3، شماره 2، صفحات 13 تا 28.
1
رضویپور، پ.؛ ایگدری، س.؛ پروباقر، ه. و کیوانی، ی.، 1394. بررسی انعطافپذیری ریختی سیاهماهی توئینی Capoeta damascina در بخش ایرانی حوضه دجله با استفاده از روش ریختسنجی هندسی. مجله پژوهشهای جانوری. سال 28، شماره 2، صفحات 170 تا 179.
2
کیوانی، ی.؛ موسوی،س.م.ع.؛ درافشان، س. و زمانیفرادنبه، م.،1395. تنوع مورفولوژیکی جمعیتهای ماهی شاه کولی جنوبی Alburnus mossulensis در حوضه کارون. نشریه پژوهشهای ماهیشناسی کاربردی. سال 4، شماره 1، صفحات 87 تا 104.
3
زمانیفرادنبه، م.؛ایگدری، س. و نصری، م.، 1393. مقایسه جمعیتهای ماهی واسپی Cabdio morar در حوضههای ماشکیل و مکران براساس صفات شمارشی و ریختسنجی هندسی. مجله علمی شیلات ایران. سال 23، شماره 2، صفحات 57 تا 69.
4
Andersson, J.; Frank, J. and Tony, S., 2005. Interactions between predator-and diet-induced phenotypic changes in body shape of crucian carp. Environmental Biology of Fishes. Vol. 273, pp: 431-437.
5
Barlow, G.W., 1961. Social behavior of the desert pupfish, Cyprinodon macularius, in the field and in the aquarium. Amer. Midland. Natur. Vol. 65, pp: 339-359.
6
Blake, R.W., 1983. Fish locomotion. Journal of Ichthyology. Vol. 13, pp: 58-68.
7
Bookstein, F.L., 1991. Morphometric tool for landmark data. Cambridge University Press, Cambridge. 435 p.
8
Cadrin, S.X., 2000. Advances in morphometric identification of fishery stocks. Reviews in Fish Biology and Fisheries. Vol. 10, pp: 91-112.
9
Caldecutt, W.J. and Adams D.C., 1989. Morphometrics of trophic osteology in the threespine stickleback, Gasterosteus aculeatus.Copeia. Vol. 4, pp: 827-838.
10
Douglas, M.E.; Douglas, M.R.; Lynch, J.M. and McElroy, D. M., 2003. Use of geometric morphometrics to differentiate Gila (Cyprinidae) within the upper Colorado River basin. Copeia. Vol. 2, pp: 389-400.
11
Esmaeili, H.R.; Mehraban, H.; Abbasi, K.; Keivany, Y. and Coad, B., 2017. Review and updated checklist of freshwater fishes of Iran: Taxonomy, distribution and conservation status. Iranian J of Ichthyology. Vol. 4, pp: 1-114.
12
Hedgecock, D.; Hutchinson, E.S.; Li, G.; Sly, F.L. and Nelson, K., 1989. Genetic and morphometric variation in the Pacific sardine Sardinops sagax caerulea: comparisons and contrasts with historical data & with variability in the northern anchovy Engraulis mordax. Fish. Bull. Vol. 87, pp: 653-671.
13
Keivany, Y. and Arab, M., 2017. Geometric morphometric comparison of trout barb, Capoeta trutta (Teleostei: Cyprinidae) in the Tigris River basin. Iranian Journal of Ichthyology. Vol. 4, No. 4, pp: 220-230.
14
Keivany, Y.; Nasri, M.; Abbasi, K. and Abdoli, A., 2016. Atlas of inland water fishes of Iran. Iran Department of Environment Press. 218 p.
15
Khaefi, R.; Esmaeili, H.R.; Sayyadzadeh, G.; Geiger, M.F. and Freyhof, J., 2016. Squalius namak, a new Chub from Lake Namak basin in Iran (Teleostei: Cyprinidae). Zootaxa. Vol. 4169, No. 1, pp: 145-159.
16
Klingenberg, C.P., 2011. MorphoJ: an integrated software package for geometric morphometrics. Molecular Ecology Resources. Vol. 11, pp: 353-357.
17
Marcus, L.F.; Corti, M.; Loy, A.; Naylor, G.J.P. and Slice, D.E., 1996. Advances in Morphometrics. NATO Advanced Science Institute Series A. Life Sciences. 284 p.
18
Mouludi Saleh, A.; Keivany, Y. and Jalali, S.A.H., 2017. Geometric Morphometric Comparison of Namak Chub (Squalius namak) in Rivers of Lake Namak Basin of Iran. Research in Zoology. Vol. 7, No. 1, pp: 1-6.
19
Reznick, D.N.; Shaw, F.H.; Rodd, F.H. and Shaw, R.G., 1990. Experimentally induced life-history evolution in a natural population.Nature. Vol. 364, pp: 357-359.
20
Rohlf, F.J. and Marcus, L.F., 1993. A revolution in morphometrics. Trends in Ecology and Evolution. Vol. 8, No. 4, pp: 129-132.
21
Rüber, L. and Adams D.C., 2001. Evolutionary convergence of body shape and trophic morphology in cichlids from Lake Tanganyika.Journal of Evolutionary Biology. Vol. 14, pp: 325-332.
22
Ruehl, C.B. and DeWitt, T.J., 2005. Trophic plasticity and fine-grained resource variation in populations of western mosquitofish, Gambusia affinis. Evolutionary Ecology Research. Vol. 7, pp: 801-819.
23
Schluter, D., 1993. Adaptive radiation in sticklebacks: size, shape & habitat use efficiency. Ecology. Vol. 74, pp: 699-709.
24
Walker, J.A., 1997. Ecological morphology of lacustrine threespine stickleback Gasterosteus aculeatus body shape. Biological Journal of the Linnean Society. Vol. 61, pp: 3-50.
25
Webb, P.W., 1984. Body form, locomotion and foraging in aquatic vertebrates. American Zoologist. Vol. 24, pp: 107-120.
26
Wimberger, P.H., 1992. Plasticity of fish body shape the effects of diet, development, family and age in two species of Geophagus. Biol J of the Linnaean Soc. Vol. 45, pp: 197-218.
27
ORIGINAL_ARTICLE
اثر پروبیوتیک لاکتوکوکوس لاکتیس (سویه PTCC 1403) در جیره غذایی، بر شاخصهای رشد و درصد بازماندگی ماهی کفال خاکستری (mugil cephalus) در برابر با کتری لاکتوکوکوس گارویه آ
تحقیق حاضر بهمنظور بررسی اثر پروبیوتیک لاکتوکوکوسلاکتیس(1403PTCC) در جیرهغذایی، بر عملکرد رشد و درصد بازماندگی ماهی کفال خاکستری (Mugil cephalus L) در برابر باکتری لاکتوکوکوس گارویه آ بهمدت 30 روز انجام گرفت. در این مطالعه، تعداد 450 قطعه ماهی کفال خاکستری با میانگین وزنی 1/4±8/44 گرم در یک طرح کاملاً تصادفی به 5 تیمار آزمایشی و 3 تکرار (با تعداد 30 عدد در هر تکرار) دستهبندی شدند. تیمارها عبارت بودند از دو تیمار آزمایشی شاهد (بدون استفاده پروبیوتیک) و تیمارهای آزمایشی 1,D2D و3D که بهترتیب حاوی 108×1/5، 108× 3 و 108 × 6 واحد تشکیل کلنی پروبیوتیک بر گرم غذا بود. بعد از 30 روز، 10 عدد بچه ماهی از هر تکرار با باکتری لاکتوکوکوس گارویه آ (تراکم107 × 1 واحد تشکیل کلنی بر میلیلیتر بهروش غوطه وری) چالش داده شدند و تلفات بهصورت روزانه تا 10 روز پس از چالش ماهیان ثبت شد. نتایج نشان داد که تمامی شاخصهای رشد و همچنین درصد بازماندگی در تیمارهای دریافتکننده پروبیوتیک بهبود یافت اما اختلاف معنیداری با گروه شاهد نشان ندادند (0/05<P)، ولی فاکتور وضعیت(CF) در تیمارهای 2D و 3D نسبت به گروه شاهد افزایش معنیداری داشت (0/05>P). درصد بازماندگی از 40 درصد در گروه شاهد به 64درصد در تیمار 3D و68درصد در تیمار2D افزایش یافت (0/05>P). بهطورکلی میتوان نتیجه گرفت که استفاده از سویه (1403PTCC) لاکتوکوکوس لاکتیس در جیره غذایی میتواند منجر به افزایش ماندگاری بچه ماهی کفال خاکستری در چالش با باکتری لاکتوکوکوس گارویهآ شود.
http://www.aejournal.ir/article_87689_854d66553d8c5cbd0191580059b400f1.pdf
2018-12-22
367
374
پروبیوتیک
لاکتوکوکوس لاکتیس
شاخص های رشد
کفال خاکستری
لاکتوکوکوس گارویه آ
جواد
قاسم زاده
ghasemzadeh@cmu.ac.ar
1
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
LEAD_AUTHOR
ظهیر
شکوه سلجوقی
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران، صندوق پستی: 83111-84156
AUTHOR
پریا
اکبری
paria.akbary@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
AUTHOR
مهدی
حسنی
hasani.mehdi@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
AUTHOR
احمدی،ک.؛ میرواقفی،ع.؛ بنایی، م. و موسوی، م.، 1390. مطالعه فاکتورهای خونی و آسیبشناسی بافتی ناشی از آئروموناس هیدروفیلا در قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss). نشریه شیلات مجله منابع طبیعی ایران. دوره 24، صفحات 217تا 227.
1
حسینیفر،ح. و پورامینی،م.، 1386. کاربرد پروبیوتیکها و پری بیوتیکها در آبزیپروری. انتشارات موج سبز. 150 صفحه.
2
حسینی، ا.؛ بذرگر، ل.؛ دیانتپور، و. و بذرگر، س.، 1392. اثر اقتصادی پروبیوتیک باکتوسل در پرورش ماهی قزلآلای رنگینکمان. تحقیقات اقتصاد کشاورزی. دوره 5، شماره 3، صفحات 157 تا 168.
3
قشقایی،ر. و لایق، م.، 1383. پروبیوتیکها (تکنولوژی نوین در آبزی پروری). انتشارات نقش مهر. 130صفحه.
4
مدبری، ع.؛ آذریتاکامی، ق.؛ بهمنش، ش. و خارا، ح.، 1392. تاثیر مقادیر مختلف زیست بارهای باکتوسل در جیره غذایی قزل بر فاکتورهای رشد و فلو باکتریایی. نشریه توسعه آبزیپروری. دوره7، شماره 4، صفحات 80 تا 84.
5
مطلبی، ع.؛ صفری،ر. و غرقی، ا.، 1389. پروبیوتیکها و کاربرد آنها در آبزیپروری. مجموعه مقالات اولین همایش پروبیوتیک و محصولات فرآویزه. شماره 3، صفحات 66 تا 78.
6
یزدانپناهگوهرریزی، ل.، 1389. نقش باکتریهای پروبیوتیک در ماهی قزلآلای رنگینکمان جلوگیری از لاکتوکوکوزیز. مجموعه مقالات اولین همایش ملی پروبیوتیک و محصولات فراویژه. شماره 3، صفحات354 تا 355.
7
Ali, A., 2002. Probiotics in fish farming. Evaluation of a bacterial mixture PhD Thesis. University of Agricultural Sciences. Sweden.
8
Burbank, D.R.; Shah, D.H.; LaPatra, S.E. and Fornshell, K.D., 2011. Enhanced resistance to coldwater disease following feeding of probiotic bacterial strains to rainbow trout. Aquaculture. Vol. 321, pp:185-190.
9
Chen, S.; Suhko, S.; Wu, C.; Chaung, H.; Tasai, Y.; Yang, K.; Chen, Y.; Chen, T.; Lin, G.; Cheng, S.; Lin, Y.; Lee, J.; Lai, C.; Weng, Y. and Chu, Y., 2002. Lactococcus garvieae, a cause of disease in grey mullet (Mugil cephalus L.), in Taiwan.Journal of fish Diseases. Vol. 12, pp: 727-732.
10
Choi, W.; Lam, C.L.; Mo, W.Y.; Cheng, Z.; Mak, N.K.; Bian, Z.X. and Wong,M.H., 2014. Effect of the modified Hunglian Jiedu decotion on the resistance in grey mullet (Mugil cephalus L.) to Lactococcus garvieae. Marine pollution Bulletin. Vol. 85, pp: 816-823.
11
Doménech, A.; Prieta, J.; Fernández-Garayzábal, J.F.; Collins, M.D.; Jones, D. and Dominguez, L., 1993. Phenotypic and phylogenetic evidence for a close relationship between Lactococcus garvieae and Enterococcus seriolicida.Journal of Microbiology. Vol. 9, pp: 63-68.
12
EFSA (European Food Safety Authority). 2008. Technical guidance prepared by the Panel Additives and Products or Substances used in Animal Feed (FEEDAP) on the update of the criteria used in the assessment of bacterial resistance to antibiotics of human or veterinary portance.http://www.efsa.eu.int/cs/BlobServer/ScientificOpinion/feedapopej732tgantimicrobialresistanceen.pdf .
13
Elder, A. and Ghittino, C., 1999. Lactococcus garvieae and Streptococcus iniae infections in rainbow trout Oncorhynchus mykiss similar, but different diseases. Diseases Aquatic Organisms. Vol. 36, pp: 227-231.
14
Ferguson, R.M.W.; Merrifield, D.L.; Harper, G.M.; Rawling, M.D.; Mustafa, S.; Picchietti, J. L.; Balcazar, J. l. and Davies, S.J., 2010. The effect of pediococcus acidilactici on the gut microbiota and immune status of on growing red tilapia. Journal of Applied Microbiology. Vol. 109, pp: 851-862.
15
Fuller, R., 1992. History and development of probiotics. In: Fuller, R. (Ed.), Probiotics: The Scientific Basis. Champan and Hall, New York. 108 p.
16
Gatesoupe, A. and Mikkelson, H., 1999. Effect of supplementing the feed in turbot with lactic acid bacteria and immono-stimulating peptides during a challenge trail with vibrio angullarium. Aquaculture. Vol. 167, pp: 103-113.
17
Gildberg, A.; Mikkelsen, H.; Sandaker, E. and Ringo, E., 2002. Probiotic effect of lactic acid bacteria in the feed on growth and survival of fry of atlantic cod (Gadus morhua). Journal of Hydrobiologia. Vol. 352, pp: 279-285.
18
Gomez-Gil, B.; Roque, A. and Turnbull, J.F., 2000. The use of a selection of probiotic bacteria for use in the culture of larval aquatic organisms. Aquacul. Vol. 9, pp: 259-270.
19
Heo, W.S.; Kim, Y.; Kim, E.; Bai, S. and Kong, S., 2013. Effects of dietary probiotic, Lactococcus lactis subsp. lactis I2, supplementation on the growth and immune response of olive flounder. Aquaculture.Vol. 24, pp: 376-379.
20
Jobron, A.; Olsson, J.C.; Westerdahl, A.; Conway, P.L. and Kejellberg, S., 1997.Colonization in the fish intestinal tract and production of inhibitory substance in intestinal mucus and faecal extract by carnobacterium sp strain k1. Fish diseases. Vol. 20, pp: 383-392.
21
Kaoort, S.B.; Tucker, J.W.; Thoresen, M. and Sennett, D.G., 2004. Current methodology for the use of probiotic bacteria in the culture of marine fish larvae. World Aquaculture Society. Vol. 33, pp: 286-291.
22
Lemos, M.L.; Dopazo, C.P.; Toranz, A.E. and Barja, L., 1995. Competitive dominance of antibiotic producing marine bacteria in mixed cultures. Journal of Applied Bacteriology. Vol. 71, pp: 228-232.
23
Macey, B.M. and Coyne, V.E., 2005. Improved growth rate and disease resistance in farmed Haliotismidae through probiotic treatment. Aquaculture. Vol. 245, pp: 249-261.
24
MacFarland, J.F., 2000. Biochemical testes for identification of medical bacteria. Williams and Wilkins. New York.
25
McIntosh, D.; Samocha, T.M.; Jones, E.R.; Lawrence, A.L.; McKee, D.A.; Horowitz, S. and Horowitz, A., 2000. The effect of a commercial bacterial supplement on the high-density culturing of Litopenaeus vannamei with protein diet in an outdoor tank system and no water exchange. Aquacultural Engineering. Vol. 21, pp: 215-227.
26
Mocanu, M.; Cristea, V.; Dediu, L.; Bocioc, E.; Gerecu, R. and Vasilean., I., 2013.The effect of probiotic diet on growth and hematology parameters of rainbow trout. Agricultural Sciences and Veterinary Medicine Iasi. Vol. 59, pp: 258-263.
27
Pirarat, N.; Pinpimai, K.; Endo, M.; Katagiri, T.; Ponpornpisit, A.; Chasue, N. and Maita, M., 2011. Modulation of intestinal morphology and immunity in Nile tilapia (Oreochromis niloticus)by Lactobacilus rhammnosus GG. Reserch in Veterinary science. Vol. 91, pp: 92-97.
28
Vadstein, O.; Oie, G.; Olsen, Y.; Salvesen, I.; Skjermo, J. and Skjakbraek, K., 1993. A strategy to obtain microbial control during larval development of marine fish, Fish Farming Technology. Vol. 43, pp: 167-188.
29
Vendrell, D.; Balca´zar, J.L.; Ruiz-Zarzuela, I.; de Blas, I.;Girone´s, O. and Muzqu´iz, J.L., 2006. Lactococcus garvieae in fish: A review. Comparative Immunology Microbiology and Infectious Diseases. Vol. 29, pp: 177-198.
30
Yasuda, K. and Taga, N., 1980. A mass culture method for Artemia salina using bacteria as food. Journal of Microbial. Vol. 18, pp:53-62.
31
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تجمع فلزات سنگین جیوه ،سرب و کادمیوم در بافت های عضله،کبد و مغز گاوماهی گرد Neogobius melanostomus دریای خزر در استان مازندران
هدف از این تحقیق بررسی و مقایسه میزان تجمع فلزات سنگین جیوه، سرب و کادمیوم در بافتهای عضله، کبد ومغز گاوماهی Neogobius melanostomusدر استان مازندران بود که در ساری، بابلسر، فریدونکنار، رویان و رامسر در سواحل جنوبی دریای خزر نمونه برداری انجام گرفت. در این تحقیق 15 نمونه در سال های 95-1394 از این سواحل تهیه شد. آمادهسازی نمونهها براساس روش هضم مرطوب و اندازهگیری میزان تجمع عناصر غیرضروری با استفاده از دستگاه جذب اتمی Atomic absorption (A.A.S و دستگاه تجزیه گر جیوه مستقیم DMA-80 انجام شد. نتایج این تحقیق نشان داد، میانگین غلظت فلز کادمیوم در بافت کبد، عضله و مغز 0/15±0/33، 0/10±0/28 و 0/05±0/19 و میانگین غلظت سرب در بافت کبد، عضله و مغز 0/01±9/41، 1/89±10/5 و 2/18±7 میلی گرم در کیلوگرم (وزن مرطوب)، میانگین غلظت جیوه دربافت کبد، عضله و مغز 10/30±43/10، 33/10±85/05 و 3/07±8/24 میکروگرم در کیلوگرم (وزن مرطوب) بوده است. آنالیز واریانس یک طرفه (One way ANOVA) نشان داد که بین ایستگاه های مورد بررسی از نظر میانگین غلظت جیوه در اندام مغز و از نظر میانگین غلظت سرب در اندام عضله اختلاف معنی دار آماری مشاهده نگردید (0/05>p). بر طبق آنالیز آماری همبستگی پیرسون، ارتباط معکوس بین طول استاندارد و تجمع کادمیوم در عضله و کبد مشاهده شد. بالاترین میزان تجمع جیوه در بافت عضله بود و کم ترین میزان تجمع در بافت مغز بود و میزان انباشت فلزات سرب و کادمیوم در بافت های هدف گاوماهی بیش تر از حد مجاز استاندارد و فلز جیوه پایین تر از حد مجاز استانداردهای(WHO/FAO/NHMRC/MAFF (UK بوده است.
http://www.aejournal.ir/article_88086_fa94dd552615590f7ec70e23beecb350.pdf
2018-12-22
375
380
کادمیوم
سرب
مغز
گاوماهی Neogobius melanostomus
دریای خزر
محمد رضا
عدالت سروستانی
reza_edalat_60@yahoo.com
1
گروه علوم دریایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
امینی رنجبر، غ.ر. و ستوده نیا، ف.، 1384. تجمع فلزات سنگین در بافت عضله ماهی کفال طلایی (Mugil auratus) دریای خزر در ارتباط با برخی مشخصات بیومتریک (طول استاندارد، وزن، سن و جنسیت). مجله علمی شیلات ایران. دوره 14، شماره 3، صفحات 1 تا 18.
1
اسماعیلی ساری، ع.، 1381. آلاینده ها، بهداشت و استاندارد محیط زیست. انتشارات نقش مهر. چاپ اول، تهران. 767 صفحه.
2
اسماعیلی ساری، ع.؛ نوری ساری، ح. و اسماعیلی ساری، ا.، 1386. جیوه در محیط زیست. انتشارات بازرگان، چاپ اول، رشت. 226 صفحه.
3
الصاق، ا.، 1390. ارزیابی تراکم روی، مس، کبالت و منگنز در بافت خوراکی ماهیان سفید و کپور دریای خزر. مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی گرگان. دوره 13، شماره 4، صفحات 107 تا 113.
4
پروانه، م.؛ خیرور، ن.؛ نیک پور، ی.؛ نبوی، س.م.ب.، 1390. غلظت فلزات سنگین در ماهی کفشک گرد و رسوبات خور موسی در استان خوزستان. مجله علمی شیلات ایران. سال 20، شماره 2، صفحات 153 تا 158.
5
پورمقدس، ح. و شهریاری، ع.، 1389. غلظت کادمیوم، کروم، سرب، نیکل و جیوه در سه گونه از ماهیان مصرفی شهر اصفهان. مجله تحقیقات نظام سلامت. دوره 6، شماره 1، صفحات 30 تا 36.
6
جعفرزاده حقیقی، ن.ا. و فرهنگ، م.، 1385. آلودگی دریا (ترجمه)، انتشارات آوای قلم، چاپ اول، تهران. 393 صفحه.
7
خدابنده،ص.؛طلایی.ر. وقیومی.ر.، 1379. تجمع فلزات سنگین در رسوبات و آبزیان دریای خزر. مجله آب و فاضلاب. شماره 39.
8
ذوالفقاری، ق.؛ اسماعیلی ساری، ع.؛ قاسمپوری، س.م.؛ قربانی، ف.؛ احمدی فرد، ن. و شکری، ز.، 1385. ارتباط سن، جنسیت و وزن با غلظت جیوه در اندام های مختلف ماهی شاه کولی تالاب انزلی (Chalcalburnus chalcalburnus). مجله علوم و فنون دریایی. دوره 5، شماره 3 و 4، صفحات 23 تا 31.
9
سنجر، ف.؛جواهری، م. و عسکری ساری، ا.، 1388. اندازه گیری و مقایسه فلزات سنگین سرب و کادمیوم در عضله و پوست ماهی زمین کن دم نواری منطقه صیادی ماهشهر. مجله بیولوژی دریا. سال 1، شماره 4، صفحات 35 تا 46.
10
شهاب مقدم، ف.؛ اسماعیلی ساری، ع.؛ ولی نسب، ت. و کریم آبادی، م.، 1389. مقایسه تجمع فلزات سنگین در عضله سپر ماهی چهارگوش و گیش چشم درشت خلیج فارس. مجله علمی شیلات ایران. سال 13، شماره 2، صفحات 85 تا 94.
11
صادقی راد، م.؛ امینی رنجبر، غ.ر.؛ ارشد، ع. و جوشیده، ه.، 1384. مقایسه تجمع فلزات سنگین (روی، مس، کادمیوم، سرب و جیوه) در بافت عضله و خاویار دو گونه تاس ماهی ایرانی و ازون برون حوضه جنوبی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. سال 14، شماره 3، صفحات 79 تا 100.
12
صدرالساداتی، ه.؛ فاطمی، م.؛ ماشینچیان، ع. و افشارنسب، م.،1388. بررسی مقایسه میزان تجمع زیستی فلزات سنگین (نیکل، کادمیوم و سرب) در بافت نرم و پوسته میگو در مزارع پرورش میگوی استان بوشهر. پایان نامه کارشناسی ارشد، دنشگاه آزاد واحد علوم تحقیقات تهران.
13
فروغی، ر.، اسماعیلی، ع. و قاسمپوری، م.، 1386. بررسی همبستگی طول و وزن ماهی سفید سواحل مرکزی خزر جنوبی با تجمع فلزات روی و مس در بافت عضله و کبد. مجله علمی شیلات ایران.
14
فاضلی، م.ش.، ابطحی، ب. و صباغ کاشانی، آ.، 1384. سنجش تجمع فلزات سنگین سرب، نیکل و روی در بافت های ماهی کفال طلایی سواحل جنوبی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. دوره 14، شماره 1، صفحات 65 تا 78.
15
کلارک،ر.ب.،1395. آلودگی دریا. جعفرزاده حقیقی، ن.ا. و فرهنگ، م. مترجمان. چاپ اول، تهران. انتشارات آوای قلم. 393 صفحه.
16
نوذری، م.، 1384. اندازهگیری و مقایسه غلظت جیوه در اندام های مختلف اردک ماهی(Lucius esox) در تالاب انزلی. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی نور، دانشگاه تربیت مدرس. 113 صفحه.
17
Agah, H.; Leermakers, M.; Marc Elskens, S. and Fatemi, M., 2009. Accumulation of trace metals in the muscle and liver tissues offive species from the Persian Gulf. Environmental Monitoring Assess. Vol. 157, pp: 499-514.
18
Agusa, T.; Kunito, T. and Yasunaga, S., 2005. Concentrations of trace elements in marine fish and its risk assessment in Malaysia. Journal of Marine Pollution. Vol. 51, pp: 896-911.
19
Ahmad, A.K. and Shuhaimi Othman, M., 2010. Heavy metal Concentration in Sediments and fishes from Lake Chini, Pahang, Malaysia. Journal of Biological Sciences. Vol. 10, No. 2, pp: 93-100.
20
Berlin, M., 1985. Handbook of the Toxicology of Metals. Elsevier Science Publishers. (Editors), 2nd ed. London. Vol. 2, pp: 376-405.
21
Burger, J.; Gochfeld, M.; Jeitner, C.; Burke, S. and Stamm, T., 2007. Metal levels in flathead Sole (Hippoglosoides elassodon) and great scullpin (Myoxocephalus polyacan elassodon) from Adak Island, Alaska: Potential risk to predators and fishermen. Environmental Research. Vol. 103, pp: 62-69.
22
Burgar, J. and Goldfish, M., 2005. Heavy metals in commercial fish in new Jersey. Env Res. Vol. 99, pp: 403-412.
23
Bu Olayan, A.H. and Subrahmanyam, M.N., 1997. Accumulation of copper, nickel, lead and zinc by snail, Lunella coronatus and Pearl oyster, Pinctada radiata from the Kuwait coast before and after the Gulf War oil spill. Science Total Environment. Vol. 97, pp: 161-165.
24
Chen, M.H., 2002. Baseline metal concentration in sediments and fish and the determination of bioindicators in the subtropical, Baseline Marine Poullution Bulletin. Vol. 44, pp: 703-714.
25
Clark, R.B., 1992. Marine pollution, Oxford University Press, P. P172. Concentration of Cd, Cu, Cd, Se and Zn in cultured sea bass (Dicentrarchus labrax) tissue from Tyrrhenian sea and Sicilian sea by derivative stripping Potentiometer. Food Control. Vol. 17, pp: 146-152.
26
Dalman, O.; Demirak, A. and Balc, A., 2006. Determination of heavy metals (Cd, Pb) and trace elements (Cu, Zn) in sediments and fish of the Southeastern Aegean Sea (Turkey) by atomic absorption spectrometry, Food Chemistry. Vol. 95, pp: 162-157.
27
Dimari, G.A.; Abdulrahman, F.I.; Akan, J.C. and Garba, S.T., 2008. Metal Concentration in Tissues of Tilapia gallier, Craias lazera and Osteoglossidae Caught from Alau Dam, Maiduguri, Borono State, Nigeria. American Journal of Environmental Sciences. Vol. 4, pp: 373-379.
28
Dugo, G.; Lapera, L.; Bruzzes, A.; Pellicano, T.M. and Lotorco, V., 2006. Concentration of Cd, Cu, Pb, Se and Zn in cultured sea bass (Dicentrarchus labrax) tissue from Tyrrhenian sea and Silcilian sea by derivative stripping potentiometer. Food Control. Vol. 17, pp: 146- 152.
29
Dural, M.; Goksu, M.Z.L. and Ozak, A.A., 2007. Investigation of heavy metal levels in economically important fish species captured from the Tuzla lagoon. Food Chemistry. Vol. 102, pp: 415-421.
30
Eboh, L.; Mepba, H.D. and Ekpo, M.B., 2006. heavy metal contaminats and processing effects on the composition, storage stability and fatty acid profiles of five common commercially available fish species in oron local government, Nigeria. Food Chemistry. Vol. 97, No. 3, pp: 490-497.
31
Esmaelisari, A., 2002. Pollutants, Health and Environmental Standards, Naghshemehr publication. 769 p.
32
Fabris, G.; Turoczy, N.J. and Stagnitti, F., 2006. Trace metals concentration in edible tissue of snapper, flathead, lobster and abalone from coastal waters of Victoria. Australia ecotoxicology & environmental safety. Vol. 63, pp: 286-292.
33
FAO Yearbook. 2005. Annuaire anuario fishery statistics capture production. Vol.100/1, 539 P.
34
Kalay, G. and Bevis, M.J., 2003. Structure and physical property relationships in processed polybutene. Journal of Applied Polymer Science. Vol. 88, pp: 814-824.
35
MOOPAM. 1999. Manual of oceanographic observations and pollutant analysis methods. ROPME. Kuwait. Vol. 20.
36
Murozumi, M.; Chow, T.J. and Patterson, C.C., 1969. Chemicall Concentrations of pollution Lead aerosols, terrestrial dusts and sea salts in Greenland and antractic snow strata. Geochemical. Vol. 33, pp: 1247-1294.
37
Okoye, B.C.O., 1991. Heavy metals and organisms in the Lagos Lagoon. International Journal of Environmental Studies. Vol. 37, pp. 285-292.
38
Olowu, R.A.; Ayejuyo, O.O.; Adewuyi, G.U.; Adejoro, I.A.; Denloye, A.A.B.; Babatunde, A.O. and Ogundajo, A.L., 2010. Determination of Heavy Metals in Fish Tissues, Water and Sediment from Epe and Badagry Lagoons, Lagos, Nigeria. Journal of Chemistry. Vol. 7, No. 1, pp: 215-221.
39
Romeo, M.; Siau, Y.; Sidoumou, Z. and Gnassia-Barelli, M., 1999. Heavy metal distribution in different fish specice from the Mauritania coast. Journal of Science of the Total Environment. Vol. 232, No. 3, pp: 75-169.
40
Turkmen, M.; Turkmen, A. and Tepe, Y., 2008. Metal contaminattons in five fish spacies from Black, Medierranean saes of Turkey. Journal of the Chilean Chemical Society.
41
Weng, P.T.S.; Silverberg, B.A.; Chau, Y.K. and Hodson, P.V., 1978. laedand Aquatic Biota, InJ.O.(ed) the Biochemistry of Laed in the Environment, Elsevier Holland. Amsterdam. 279 p.
42
Zauke, G.; Savinov, V.; Ritterhoff, J. and Savinova, T., 1999. Heavy metalsin fish from Barent Sea, Sci Total Eniviron. Vol. 227, No. 2-3, pp: 161-73.
43
ORIGINAL_ARTICLE
هیستومورفولوژی مقایسهای مری و روده در دو گونه ماهی گوشت خوار و فیتوپلانکتون خوار خلیج فارس
ماهی بیاح (Liza abu) و شبه شوریده (Johnius belangerii) به علت بازار پسندی دارای ارزش اقتصادی بالا در ناحیه خلیج فارس میباشند. در مطالعه حاضر تفاوتهای هیستومورفولوژیکی مری و روده بین ماهی بیاح با رژیم فیتوپلانکتونخواری و شبه شوریده با رژیم گوشتخواری مورد بررسی قرار گرفت. بدین منظور 20 قطعه ماهی از هر گونه با ویژگی های زیست سنجی مشابه از خور موسی صید شدند. پس از تشریح نمونههای بافتی از قسمتهای ابتدا و انتهایی مری هم چنین قطعاتی از قسمت های ابتدایی، میانی و انتهای روده برداشت گردید. نمونههای بافتی پس از طی مراحل معمول آماده سازی شامل فیکس کردن در فرمالین بافر ده درصد، آبگیری با سری افزایشی الکل، شفاف سازی با گزیلول، بلوک گیری با پارافین، برش با ضخامت 5 میکرون با میکروتوم، انتقال نمونه ها بر روی لام، رنگ آمیزی و در نهایت با میکروسکوپ نوری مجهز به لنز داینولیت بررسی شدند. نتایج حاصل از مطالعات میکرومتری نشان داد که مری در هر دو گونه در ناحیه مخاطی دارای چین خوردگیهای متعدد و اپیتلیوم آن از نوع سنگفرشی مطبق همراه با سلولهای ترشحی بوده است. تعداد این سلول ها در ناحیه انتهای نسبت به ناحیه ابتدایی با اختلاف معنی دار بیش تر بوده (0/05≥P) اما در ماهی بیاح در قسمت ابتدایی و در ماهی شبه شوریده در قسمت انتهایی تعداد این سلول ها بیش تر بوده است. هم چنین از ابتدا به سمت انتهای روده بر تعداد سلولهای موکوسی افزوده شده و طول پرزهای روده در قسمت میانی از سایر بخشهای روده بیش تر بود.هم چنین طول پرزها در ماهی بیاح در سه قسمت ابتدایی، میانی و انتهایی روده نسبت به شبهشوریده بزرگ ترمشاهدهشد (0/05≥P). به طورکلی در هیستومورفولوژی مری و روده دو گونه مورد مطالعه تفاوت ها و شباهت هایی از نظر ساختار مشاهده گردید که می تواند متاثر زندگی و چگونگی تغذیه موجود باشد.
http://www.aejournal.ir/article_87132_7a10da4ae8ed5b6db8a3486d38d3337c.pdf
2018-12-22
381
388
هیستومورفولوژی
مری
روده
بیاح
شبه شوریده
سعید
حسن زاده
abdir351@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه علوم و فنون دریایی، خرمشهر، ایران
AUTHOR
رحیم
عبدی
abdir351@gmail.com
2
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه علوم و فنون دریایی، خرمشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد علی
سالاری علی آبادی
salari1346@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه علوم و فنون دریایی، خرمشهر، ایران
AUTHOR
عبدالعلی
موحدی نیا
movahedina@yahoo.com
4
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران
AUTHOR
زهرا
بصیر
z.basir@scu.ac.ir
5
گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز،اهواز، ایران
AUTHOR
Abol Munafi, A.B.; Liem, P.T.; Van, M.V.and Ambak, M.A., 2006. Histological ontogeny of the digestive system of Marble goby (Oxyeleotris marmoratus) Larvae. Journal of Sustainability Science and Management. Vol. 1, No. 2, pp: 79-86.
1
AL Abdulhadi, H.A., 2005. Some comparative histological studies on alimentary tract of Tilapia fish (Tilapla spilurus) and Sea Bream (Mylio cuvieri). Egyptian Journal of Aquatic research. Vol. 31, No. 1, pp: 387-396.
2
Banankhojasteh, S.M.; Sheikhzadeh, F.; Mohammadenjad, D. and Azami, A., 2009. Histochemical and Ultrastructural sstudy of the intestine of Rainbow Trout (Oncrohynchus mykiss). World Appliedsciences. Vol. 6, No. 11, pp: 1525-1531.
3
Bocina, I.; Santic, Z.; Restovic, I. and Topic, S., 2017.Histology of the digestive system of the garfishBelone belone (Teleostei: Belonidae). The European Zoological Journal. Vol. 84, No. 1, pp: 41-49.
4
Carrasson, M.; Grau, A.; Dopazo, L.R. and Crespo, S., 2006. A histological, histochemical and ultrastructural study of the digestive tract of dentex (Pisces، Sparidae). Journal of Histology and Histopathology. Vol. 21,
5
pp: 579-593.
6
Cinar, K. and Senol, N., 2006. Histological and histochemical characterization of the Mucosa of the digestive tract in flower fish (Pseudophoxinus antalyae). Journal of Veterinary Medicine. Vol. 35, No. 3, pp: 147-151.
7
Chan, A.S.; Horn, M.H.; Dickson, K.A. and Gawlicka, A., 2004.Digestive enzyme activities in carnivores and herbivores: comparisons among four closely related prickleback Wshes (Teleostei: Stichaeidae) from a California rocky intertidal habitat. Journal of Biology. Vol. 65, pp: 848-858.
8
Dale, O.B.; Torud, B.; Kvellestad, A.; Koppang, H.S. and Koppang, E.O., 2009. From chronic feed-induced intestinal inflammation to adenocarcinoma with metastases in salmonid fish. Journal of Histology and Histopathology. Vol. 14, pp: 147-153.
9
Fuglem, B.; Jirillo, E.; Bjerka, S.I.; Kiyono, H.; Nochi, T.; Yuki, Y. and Raida, M., 2010. Antigen-sampling cells in the salmonid intestinal epithelium. Developmntal Comparative Immunology. Vol. 34, pp: 768-774.
10
Geyikoglu, F., 2004. Histological, histochemical and ultrastructural investigations on the esophagus of Juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Turk Journal of Zoology. Vol. 28, pp: 73-82.
11
Goto, Y. and Kiyono, H., 2011. Epithelial cell microRNAs in gut immunity. Nat ure Immunology. Vol. 12, pp: 195-197.
12
Hajimoradi, M.; Mahboubi soufiani, N.A. and Alameh, S.K., 2007. Effect of starvation on. plasma levels of cholesterol, glucose and protein in raninbow trout, Oncorhynchous mykiss Journal of Marine Sciences and Technology. Vol. 6, pp: 23-30.
13
Ng, W.; Thes, W. and Bureau, D., 2013. On-farm feeding and feed management in tilapia aquaculture in Malaysia. Fisheries and Aquaculture Technical Paper. Vol. 583, pp: 407-413.
14
Penn, M.H.; Bendiksen E.A.; Campbell, P. and Krogdahl, A., 2011. High level of dietary pea protein concentrate induces enteropathy in Atlantic salmon (Salmo salar L.). Aquaculture. Vol. 31, pp: 267-273.
15
Petr, A. and Ellis, A., 2006. Evidence of par t iculate uptake by t he gu t of Atlant ic salmon (Salmo sala r L.). Fish Shelfish Immu nology. Vol. 20, pp: 660-664.
16
Ringo, E.; Sperstad, S.; Myklebust, R.; Refstie, S. and Krogdahl, A., 2007. Characterization of the microbiota associated with intestine of Atlantic cod (Gadus morhua L). the effect of fish meal, standard soybean meal and a bioprocessedsoybean meal. Aquaculture. Vol 261, pp: 827-841.
17
Rungruangsak, T., 2007. Digestive efficiency, growth and qualitiesof muscle and oocyte in atlantic salmon (Salmo salar l.) fed on diets with krill meal as an alternativeprotein source. Journal of food biochemistry. Vol. 3, pp: 509-540.
18
Sanden, M.; Berntssen, M.H.; Krogdahl, A. and BakkeMcKellep, A.M., 2005. An examinat ion of t he intestinal t ract of Atlan tic salmon, Salmo salar L., parrfed different varieties of soy and maize. Journal of fish Disease. Vol. 28, pp: 317-330.
19
Senol, N. and Çinar, K., 2006. Immunohistochemical localization of cholecystokinin and histamine in gastrointestinal tract in Flower Fish (Pseudophoxinus antalyae). Sdu fen edebiyat fakultesi fen dergisi (EDERGI). Vol. 1-2, pp: 26-34.
20
Suicmez, M. and Ulus, E., 2005. A study of the anatomy, histology and ultrastructure of the digestive tract of Orthrias angorae Steindachner,1897. Journal Folia biology. Vol. 53, pp: 95-100.
21
Wilson, J.M. and Castro, C., 2010. Mor phological diver sity of the gastrointestinal tract in fishes. In: Grosell M, Farell AP, Brau nerCJ, editor s. Fish hysiology. The Multifunction al Gut of Fish. Vol. 30, pp: 1-55.
22
Xiong, D.; Zhang, L.; Yu, H.; Xie, C.; Kong, Y.; Zeng, Y.; Huo, B. and Liu, Z., 2010. A study of morphology and histology of the alimentary tract of Glyptosternum maculatum (Sisoridae, Siluriformes). Acta Zoolgica. Vol. 92, pp: 161-169.
23
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثرات محافظتی داروی لیورگل بر هیستولوژی بافت کبد ماهی قرمز (Carassius auratus)
داروی لیورگل از عصاره گیاهی خارمریم تهیه می گردد. خارمریم محتوی فلاونولیگنان است و دارای اثرات محافظت کننده کبدی است. هدف این آزمایش بررسی اثرات مقادیر مختلف داروی لیورگل حاوی سطوح مختلف چربی بر پیشگیری از عارضه های کبدی شامل تورم آبی، تورم ابری، دژنره شدن، چرب شدگی، خونریزی و نکروز در ماهی قرمز بود. برای این آزمایش 540 بچه ماهیان قرمز با میانگین وزن 1±3/5 گرمی استفاده شد که به مدت 180 روز با 9 جیره غذایی مختلف با 3 تیمار 0، 0/2 و 0/5 درصد داروی لیورگل و سه سطح 9، 12 و 15 درصد چربی تغذیه شدند. در انتهای دوره آزمایش از بافت کبد ماهیان نمونه برداری شد و از هر تیمار 4 نمونه جهت آنالیز هیستوپاتولوژی استحصال شد. نتایج آزمایش نشان داد که در بین تمام تیمارهای آزمایش بیش ترین عارضه کبدی شامل تورم آبی، تورم ابری، دژنره شدن، چرب شدگی و نکروز در تیمار 6 که حاوی جیره غذایی 15 درصد چربی و بدون داروی لیورگل بود مشاهده شد. در تیمار 2 که حاوی جیره غذایی 9 درصد چربی+داروی لیورگل 0/5 درصد بود هیچ گونه عارضه کبدی مشاهده نشد. نتیجه نهایی تحقیق نشان داد که از سطوح مختلف چربی استفاده شده در آزمایش، ماهی هایی که از سطوح چربی 12 و 15 درصد استفاده کرده بودند بیش ترین ضایعات کبدی را داشتند. هم چنین در تمام تیمارهای چربی جیره غذایی (9، 12 و 15 درصد) اضافه کردن داروی لیورگل به جیره غذایی احتمالاً به علت وجود سیلی مارین باعث کاهش ضایعات کبدی در ماهی قرمز گردید.
http://www.aejournal.ir/article_88121_4eb661a32ce0176482c0fe85684cb111.pdf
2018-12-22
389
394
هیستولوژی کبد
لیورگل
چربی
ماهی کاراس طلایی
علی
صادقی
sadeghi.a_shilat@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد رضا
ایمانپور
m.imanpour@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
علی
شعبانی
shabani@gau.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
محمد
مازندرانی
mazandarani57@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
طاهره
باقری
bagheri1360@gmail.com
5
مرکز تحقیقات آب های دور، موسسه تحقیقات شیلات ایران، سازمان تحقیقات، ترویج و آموزش کشاورزی، چابهار، ایران
AUTHOR
پیغان، ر؛ رضایی، آ. و زادپرور، ن.، 1393. مطالعه تاثیر عصاره سیر خام بر میزان رشد و هیستوپاتولوژی کبد و کلیه در ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). نشریه دامپزشکی. صفحات 68 تا 76.
1
محمودی، ز؛ نویریان، ح. و فلاحتکار، ب.، 1392. تاثیر سطوح مختلف پروتئین و چربی بر عملکرد رشد بچه ماهی سفید دریای خزر (Rutilus frisii kutum). مجله علمی شیلات ایران. صفحات 101 تا 115.
2
ناصری، م.، 1392. حفظ سلامتی از دیدگاه طب سنتی ایران. انتشارات طب سنتی ایران. 282 صفحه.
3
Abdel, M. and Ahmad, M., 2009. Effect of dietary protein regime during the growing period on growth performance of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture Research. Vol. 40, pp: 1532-1537.
4
Haghighi, A., 2009. Fish and shrimp pathology. Islamic Azad university Press publishing. Tehran. Iran. pp: 166-172.
5
Halver, J.E. and Hardy, R., 2011. The effects of dietary retinoic acid on body lipiddepositi on in juvenilered Acipenser persicus. Aquaculture Research. Vol. 193, pp: 271-279.
6
Hilton, W. and Dixon, D., 1982. Effect of increased liver glycogen and liver weight on gairdneri Richardson. Journal of Fish. Vol. 5, pp: 185-195.
7
Jalali, A., 2007. Special references to the histopathological effects caused by some infections. Jurnal of Aquaculture. Vol. 55, pp: 103-115.
8
Lettern, P.; Labbe, G. and Delaforge, M., 1990. Mechanism for the protective effects of silymarin carbon tetrachloride-induced lipid peroxidation and hepatotoxicity in mice. Biochem. Pharmacol. Vol. 39, pp: 27-34.
9
Lus, M.; Durazo, E. and Viana, M., 2010. Effect of dietary lipid levels on performance, body composition and fatty acid profile of juvenile white Seabass (Atractoscion nobilis). Aquaculture. Vol. 289, pp: 101-105.
10
Mimeault, C.; Woodhouse, A. and Rudeau, V., 2005. The human lipid regulator, gemfibrozil bioconentrates and reduces testosterone in the Common carp (Cyprinus carpio). Aquatic Toxicology. Vol. 73, pp: 44-54.
11
Ogata, Y. and Oku, H., 2001. The effects of dietary retinoic acid on body lipiddepositi on in juvenilered Acipenser persicus. Aquaculture Research. Vol. 193, pp: 271-279.
12
Penrith, M.; Bastianello, S. and Penrith, H., 2008. Hepatic lipoidosis and fatty infiltration of organs in a captive African stonefish. Aquaculture Research. Vol. 180, pp: 220-229.
13
Peyghan, R. and Mahjor, A., 2009. Fish pathology 1rd edition, Shahid Chamran University Press. pp: 882-889.
14
Robert, R., 2001. Effects of atrazine on sex steroid dynamics, plasma vitellogenin concentration and gonad development in adult goldfish (Carassius auratus). Aquatic Toxicology. Vol. 6, pp: 369-379.
15
Subhadra, B.; Lochman, R.; Rawlec, S. and chan, R., 2010. Effect of dietary lipid source on the growth, tissus composition and hematological parameters of largemouth bass. Aquaculture. Vol. 80, pp: 210-222.
16
Webster, C.D. and Lim, C., 2009. Nutrient Requirement and feeding of finfish for Aquaculture. CAB International Publishing. 418 p.
17
Yang, S.D.; Lin, T.S. and Liou, H., 2007. Influence of dietary phosphorous levels on growth, metabolic response and body composition of juvenile carp (Cyprinus carpio). Aquaculture. Vol. 253, pp: 592-601.
18
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه اثرات مزمن نانوذرات و درشت ذرات تیتانیوم دی اکسید در بافت های آبشش، کبد و روده گورخرماهی (Danio rerio)
هدف این پژوهش مقایسه اثرات نانوذرات تیتانیوم دی اکسید و درشت ذرات آن بر بافت های آبشش، کبد و روده گورخرماهی (Danio rerio) است. در مطالعه حاضر تعداد 150 قطعه گورخرماهی به مدت 30 روزتحت شرایط ساکن-تجدید در معرض تیمار نانوذرات و درشت ذرات تیتانیوم دی اکسید در غلظت های 1 و 10 میلی گرم بر لیتر و 3 تکرار در هر تیمار به همراه گروه شاهد قرار گرفتند. پس از اتمام دوره (30 روز) ماهی ها در فرمالین تثبیت شده و برای انجام مطالعات بافت شناسی کلاسیک رنگ آمیزی شدند.نتایج این پژوهش نشان داد که نانوذرات تیتانیوم دی اکسید و درشت ذرات آن منجر به ناهنجاری هایی در لاملا و فیلامنت ازقبیل جدا شدن اپتلیوم، ادم، انحنا، به هم چسبیدگی، هایپرپلاژی در لاملا و پرخونی، هایپرتروفی در فیلامنت بافت آبشش گورخرماهی گردید. هم چنین ناهنجاری هایی نظیر واکوئله شدن سیتوپلاسم، افزایش مراکز ملانوماکروفاژ، تخریب هپاتوسیت ها، پرخونی و افزایش قطرسینوزوئیدها در بافت کبد گورخرماهی و آسیب هایی ازقبیل جداشدن اپیتلیوم، افزایش و تورم سلول های جامی، نکروز و پرخونی در روده گورخرماهی مشاهده شد. براساس یافته های این پژوهش میزان ناهنجاری ها درتیمارهای نانو از درشت ذرات بیش تر بود. هم چنین، بیش تر عارضه های ایجاد شده وابسته به غلظت مواد بود، به طوری که شدت ناهنجاریها در غلظت 10 میلی گرم برلیتر از نانوذره تیتانیوم دی اکسید در مقایسه با سایر تیمارهای مورد بررسی بیش تر بود.
http://www.aejournal.ir/article_86769_1276fa700eed74de26470ede49567db5.pdf
2018-12-22
395
406
آسیب شناسی بافتی
فیلامنت آبششی
نانومواد
تیتانیوم دی اکسید
هپاتوسیت
بافت روده
مریم
محجوبیان
bayan.ba93@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشگاه گیلان، رشت، ایران، صندوق پستی: 13351914
AUTHOR
اکرم سادات
نعیمی
akramnaeemi@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی، دانشگاه گیلان، رشت، ایران، صندوق پستی: 13351914
LEAD_AUTHOR
اقدامی، م.؛ عریان، س. و نظرحقیقی، ف.، 1392. تغییرات در ساختار آبشش ماهی طلایی ((Carassiu sauratusدر مواجهه نیمه مزمن با آلاینده های آلی. مجله فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان. سال1، شماره2، صفحات97 تا 177.
1
جوهری، ع.، 1390. کاربرد نانوذرات نقره در کاهش عفونت قارچی بر انکوباسیون و قدرت آزادسازی تخم بر برخی از ویژگی های فیزیولوژیک و ژنومی ماهی قزل آلا رنگین کمان. پایان نامه دکترا گروه منابع طبیعی، دانشگاه تربیت مدرس. 160 صفحه.
2
راکی، م.؛ پیکان حیرتی، ف. و درافشان، س.، 1395. تغییرات آسیب شناسی بافت آبشش و کبد عروس ماهی زاینده رود (Petroleuciscus esfahani) پس از مواجهه با نانوذرات نقره و نیترات نقره محلول در آب. نشریه پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. سال4، شماره 4، صفحات۷۹ تا ۹۵.
3
مزارعی، س.؛ سجادی، م.م.؛ سوری نژاد، ا.؛ جوهری، س.ع. و اسدی، م.، 1396. تعیین غلظت کشنده نانو نقره در ماهی گورخری معمولی (Aphanius dispar Rüppell). مجله بوم شناسی آبزیان. سال 4، شماره 4، صفحات110 تا 115.
4
محمدزاده باران، س.؛ وثوقی، غ.؛ ماشینچیان مرادی، ع.؛ عباسی، ف. و قوام مصطفوی، پ.، 1388. بررسی اثرغلظت های گوناگون کلرید جیوه بر بافت عضلانی ماهی کلمه دریای خزر (Rutilus rutilus) در شرایط آزمایشگاهی. فصلنامه علمی پژوهشی زیست شناسی جانوری. سال1، شماره 4، صفحات41 تا 50.
5
محمدی، خ.؛ محمدی آذرم، ح.؛ سلاطی، ا.پ. و رجب زاده قطرمی، ا.، 1395. اثر سطوح مختلف نیاسین در جیره بر بافت شناسی کبد، روده و فعالیت برخی آنزیم های کبدی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله منابع طبیعی ایران. دوره 9، شماره 2، صفحات 253 تا 263.
6
Abdel-Khalek, A.A.; Kadry, M.; Hamed, A. and Marie, M.A., 2015. Ecotoxicological Impacts of Zinc Metal in Comparison to its Nanoparticles in Nile tilapia; (Oreochromis niloticus). The Journal of Basic and Applied Zoology. Vol.72, pp: 113-125.
7
Al-Bairuty, G.A., 2013. Histopathological Effects of Metal and Metalic Nanoparticles on the Body Systems of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Ph. D Thesis, School of Biomedical and Biological Sciences, University of plymouth. 319 p.
8
Al-Subiai, S.N.; Arlt, V.M.; Frickers, P.E.; Readman, J.W.; Stolpe, B.; Lead, J.R.; Moody, A.J. and Jha, A.N., 2012. Merging nano-Genotoxicology with Eco Genotoxicology: An Integrated Approach to Determine Interactive Genotoxic and Sub-Lethal Toxic Effects of C60 Fullerenes and Fluoranthene in Marine Mussels, Mytilus sp. Mutation Research/Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis. Vol. 745, No.1, pp: 92-103.
9
Carrasson, M.; Grau, A.; Dopazo, L.R. and Crespo, S.A., 2006. Histological, Histochemical and Ultrastructural Study of the Digestive Tract of Dentex dentex (Pisces, Sparidae). Histology and Histopathology. Vol. 21, pp: 579-593.
10
Cengiz, E.I.; Unlu, E. and Balci, K., 2001. The Histopathological Effects of Thiodan on the Liver and Gut of Mosquitofish, Gambusia affinis. Journal of Environmental Sciences Health B. Vol. 36, No. 1, pp: 75-85.
11
Chen, J.; Dong, X.; Zhao, J. and Tang, G., 2009. In Vivo Acute Toxicity of Titanium Dioxide Nanoparticles to Mice after Intraperitioneal Injection. Journal of Applied Toxicology. Vol. 29, No. 4, pp: 330-337.
12
Di Giullio, R.T. and Hinton, D.E., 2008. The Toxicology of Fishes. Taylor and Francis Group by CRC Press. New York. 1071 p.
13
Evans, D.H.; Piermarini, P.M. and Choe, K.P., 2005. The Multifunctional Fish Gill: Dominant Site of Gas Exchange, Osmoregulation, Acid-Base Regulation, and Excretion of Nitrogenous Waste. Physiological reviews. Vol. 85, No. 1, pp: 97-177.
14
Fracácio, R.; Verani, N.F.; Espíndola, E.L.G.; Rocha, O.; Rigolin-Sá, O. and Andrade, C.A., 2003. Alterations on Growth and Gill Morphology of Danio rerio (Pisces, Ciprinidae) Exposed to the Toxic Sediments. Brazilian archives of Biology and Technology. Vol. 46, No. 4, pp: 685-695.
15
Gaber, H.S., 2007. Impact of Certain Heavy Metals on the Gill and Liver of the Nile tilapia )Oreochromis niloticus(. Egyptian Journal of Aquatic Biology and Fisheries. Vol. 11, No. 2, pp: 79-100.
16
Gao, Y.; Masuda, Y.; Seo, W.S.; Ohta, H. and Koumoto, K., 2004. TiO2 Nanoparticles Prepared Using an Aqueous Peroxotitanate Solution. Ceramics International. Vol. 30, No. 7, pp: 1365-1368.
17
Gernhöfer, M.; Pawert, M.; Schramm, M.; Müller, E. and Triebskorn, R., 2001. Ultrastructural Biomarkers as Tools to Characterize the Health Status of Fish in Contaminated Streams. Journal of Aquatic Ecosystem Stress and Recovery Formerly Journal of Aquatic Ecosystem Health.Vol. 8, No. 3, pp: 241-260.
18
Gesto, M.; Soengas, J.L. and Migues, J.M., 2008. Acute and Prolonged Stress Responses of Brain Monoaminergic Activity and Plasma Cortisol level in Rainbow trout are Modified by PAH Treatment. Aquatic Toxicology. Vol. 86, No. 3, pp: 341-351.
19
Hao, L.; Wang, Z. and Xing, B., 2009. Effect of Sub acute Exposure to TiO2 Nanoparticles on Oxidative Stress and Histopathological Changes in Juvenile Carp )Cyprinus carpio(. Journal of Environmental Sciences. Vol. 21, No. 10, pp: 1459-1466.
20
Hao, L.; Chen, L.; Hao, J. and Zhong, N., 2013. Bioaccumulation and Sub acute Toxicity of Zinc Oxide Nanoparticles in Juvenile Carp (Cyprinus carpio): A Comparative Study with its Bulk Counterparts. Ecotoxicology and Environmental Saftey. Vol. 91, pp: 52-60.
21
Hashimoto, K.; Irie, H. and Fujishima, A., 2005. TiO2 Photocatalysis a Historical Overview and Future Prospects. Japanese Journal of Applied Physics. Vol. 44, No. 12, pp: 8269-8285.
22
Ispas, C.; Andreescu, D.; Patel, A.; Goia, D.V.; Andreescu, S. and Wallace, K.N., 2009. Toxicity and Developmental Defects of Different Sizes and Shape Nickel Nanoparticles in Zebrafish. Environmental Science and Technology. Vol. 43, No. 16, pp: 6349-6356.
23
Keller, A.A. and Lazareva, A., 2013. Predicted Releases of EngineeredNanomaterials: From Global toRegional to Local. EnvironmentalSciences and Technology Letter. Vol. 1, pp: 65-70.
24
Liebel, S.; Tomotake, M.E.M. and Oliveira ribeiro, C.A., 2013. Fish Histopathology as Biomarker to Evaluate Water Quality. Ecotoxicology and Environmental Contamination. Vol. 8, pp: 9-15.
25
Mansouri, B.; Maleki, A.; Johari, S.A.; Shahmoradi, B.; Mohammadi, E. and Davari, B., 2017. Histopathological Effects of Copper Oxide Nanoparticles on the Gill and Intestine of Common Carp (Cyprinus carpio) in the Presence of Titanium Dioxide Nanoparticles. Chemistry and Ecology. Vol. 33, No. 4, PP: 295-308.
26
Miranda, R.G.; Grötzner, S.R.; Voigt, C.L.; Campos, S.X.; Randi, M.A.F.; Oliveira ribeiro, C.A. and Filipakneto, F., 2016. Effects of Realistic Concentrations of TiO2 and ZnO Nanoparticles in Prochilodus lineatus Juvenile Fish. Environmental Science and Pollution Research Int. Vol. 23, pp: 5179-5188.
27
Perera, S. and Pathiratne, A., 2012. Haemato immunological and Histological Responses in Nile tilapia, Oreochromis niloticus Exposed to Titanium Dioxide Nanoparticles. Sri Lanka Journal of Aquatic Sciences. Vol. 17, pp: 1-18.
28
Rodrigues, R.V.; Miranda-Filho, K.C.; Gusmao, E.P.; Moreira, C.B.; Romano, L.A. and Sampaio, L.A., 2010. Deleterious Effects of Water-Soluble Fraction of Petroleum, Diesel and Gasoline on Marine Pejerrey Odontesthes argentinensis Larvae. Science of the Total Environment. Vol. 408, pp: 2054-2059.
29
Roy, D.; Ghosh, D. and Kumar Mandal, D., 2013. Cadmium InducedHistopathology in the Olfactory Epithelium of a Snakehead Fish,Punctatus (Bloch). International Journal of Aquatic Biology. Vol. 1, No. 5, pp: 221-227. Schrand, A.M.; Braydich-Stolle, L.K.; Schlager, J.J.; Dai, L. and Hussain, S.M., 2008. Can Silver nanoparticles be Useful as Potential Biological Labels? Nanotechnology. Vol. 19, No. 23, pp: 45433-5707.
30
Shaw, B.J., 2011. The Ecotoxicology of Engineered Nanoparticles to Freshwater Fish. Ph.D. Thesis, University of Plymouth. 325 p.
31
Subashkumar, S. and Selvanayagam, M., 2014. First Report on: Acute toxicity and Gill Histopathology of Fresh Water Fish (Cyprinus carpio) Exposed to Zinc Oxide (ZnO) Nanoparticles. Journal of Scientific and Research Publications.Vol. 4, No. 3, pp: 2250-3153.
32
Suresh, N., 2009. Effect of Benzo(Alpha)P yrene on liver, Spleen and Kidney Melanomacrophage Centers in Tilapia mossambica. Journal of Environmental Biology. Vol. 30, No. 40, pp: 505-508.
33
Sumanas, S. and Lin, S., 2004. Zebrafish as a Model System for Drug Target Screening and Validation. Drug Discovery Today:Targets.Vol. 3, No. 3, pp: 89-96.
34
Suganthi, P.; Murali, M.; Sadiq Bukhari, A.; Syed Mohamed, H.E.; Basu, H. and Singhal, R.K., 2015. Behavioural and Histological Variations in Oreochromis mossambicus after Exposure to ZnO Nanoparticles. International Journal of Applied Research. Vol. 1, pp: 524-531.
35
Venkatachalam, N.; Palanichamy, M. and Murugesan, V., 2007. Sol gel Preparation and Characterization of Nano size TiO2: it’s Photocatalytic Performance. Materials Chemistry and Physics. Vol. 104, No. 2, pp: 454-459.
36
White, R.M.; Sessa, A.; Burke, C.; Bowman, T.; LeBlanc, J.; Ceol, C.; Bourque, C.; Dovey, M.; Goessling, W.; Burns, C.E. and Zon, L.I., 2008. Transparent Adult Zebrafish as a Tool for in Vivo Transplantation Analysis. Cell Stem Cell. Vol. 2, No. 2, pp: 183-189.
37
Yang, J.; Mei S. and Ferreira, J.M.F., 2001. Hydrothermal Synthesis of TiO2 Nanopowders from Tetraalkylammonium Hydroxide Peptized Sols. Materials Science and Engineering. Vol. 15, pp: 183-185.
38
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر دوره محرومیت غذایی بر شاخصهای خونشناسی ماهی پرت (Cichlasoma synspilum ♀ × Cichlasoma citrinellum ♂) تغذیهشده با جیره حاوی آستاگزانتین و نمک صفراوی
هدف از این مطالعه بهبود شاخصهای خونشناسی ماهی پرت در مواجه با دوره محرومیت غذایی بود. برای انجام این مطالعه، 200 قطعه ماهی پرت (میانگین وزنی6/2±25/5 گرم و میانگین طولی0/43±6/34 سانتیمتر) در سه تیمار با دو تکرار و هر تکرار شامل 33 قطعه ماهی که شامل تیمار شاهد(جیره پایه)،تیمار آستاگزانتین (جیره حاوی 4 گرم بر کیلوگرم آستاگزانتین) و تیمار آستاگزانتین- نمک صفراوی (جیره حاوی4 گرم بر کیلوگرم آستاگزانتین و 1200 میلیگرم بر کیلوگرم نمک صفراوی) به مدت 90 روز تغذیه شدند و سپس دوره محرومیت غذایی به مدت یک هفته اعمال شد. در پایان دوره تغذیه، نتایج نشان داد بهجز تعداد گلبولهای سفید که در اثر تغذیه با جیرههای حاوی آستاگزانتین بهتنهایی یا در تلفیق با نمک صفراوی، بهطور معنیداری افزایشیافته بود (0/05>P)، سایر شاخصهای خونشناسی تحت تأثیر تیمارهای تغذیهای قرار نگرفت (0/05<P). افت تعداد گلبولهای قرمز خون ماهیان تغذیهشده با آستاگزانتین بهتنهایی یا در تلفیق با نمک صفراوی پس از محرومیت غذایی مشاهده شد (0/05>P). کاهش معنیداری در تعداد گلبولهای سفید در ماهیان تغذیهشده با جیره شاهد، پس از اعمال دوره محرومیت غذایی مشاهده شد (0/05>P) ولی این کاهش در تیمارهای آستاگزانتین و آستاگزانتین- نمک صفراوی مشاهده نشد (0/05<P). بهطورکلی میتوان بیان داشت که استفاده از آستاگزانتین بهتنهایی یا در تلفیق با نمک صفراوی تأثیر چندانی بر شاخصهای خونشناسی ماهی پرت بهجز ممانعت در کاهش تعداد گلبولهای سفید در مواجه با تنش محرومیت غذایی نداشت.
http://www.aejournal.ir/article_88238_fe77b34a1bb08004ea690e4af408d037.pdf
2018-12-22
407
414
ماهی پرت
آستاگزانتین
نمک صفراوی
محرومیت غذایی
امین
مخلص ابادی
aminarcher@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران، صندوق پستی: 83111-84156
AUTHOR
سالار
درافشان
sdorafshan@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران، صندوق پستی: 83111-84156
LEAD_AUTHOR
فاطمه
پیکان حیرتی
fheyrati@cc.iut.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران، صندوق پستی: 83111-84156
AUTHOR
اکبری، پ. و ربانی نژاد، ف.، 1395. اثر مکمل غذایی آستاگزانتین بر پاسخ استرس تراکم و عملکرد ماهی طلال (Rastrelliger kanagurta). نشریه شیلات. دوره 69، شماره 3، صفحات 309 تا 322.
1
مرشدی، و.؛ عشوری، ق.؛ کوچین، ی.؛ یاوری، و.؛ بهمنی، م. و پوردهانی، م.، 1390. تأثیر دورههای کوتاهمدت بر روی فاکتور های خونی فیل ماهی پرورشی (Huso huso). مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 66، شماره 4، صفحات 363 تا 368.
2
ادهمی، الف.؛ جعفری کناری، س. و خلیلی، خ.، 1395. تأثیر رنگدانههای طبیعی (هویج و لبو) و رنگدانه مصنوعی (آستاگزانتین) جیره بر شاخصهای رشد، فاکتورهای خونی و تغییرات رنگ پوست، بافت و خون قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss). فصلنامه علمی پژوهشی علوم و فنون شیلات. دوره 5، شماره 4، صفحات 1 تا 11.
3
Barbosa, M.; Morais, R. and Choubert, G., 1999. Effect of carotenoid source and dietary lipid content on blood astaxanthin concentration in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 176, No. 3, pp: 331-341.
4
Berg, S.; Trollfors, B.; Persson, E.; Backhaus, E.; Larsson, P.;Claesson, B.E.; Jonsson, L.; Radberg, G. and Johansson, S., 2006. Serotypes of Streptococcus pneumoniae isolated from blood and cerebrospinal fluid related to vaccine serotypes and to clinical characteristics. Scandinavian Journal of Infectious Diseases. Vol. 38, No. 6, pp: 427-432.
5
Bjerkeng, M. and Liaaen-Jensen, S., 2000. Plasma appearance and distribution of astaxanthin E/Z and R/S isomers in plasma lipoproteins of men after single dose administration of astaxanthin. The Journal of Nutritional Biochemistry. Vol. 11, No. 10, pp: 482-490.
6
Buijse, A.D. and Houthuijzen, R.P., 1992. Piscivory, growth, and size-selective mortality of age 0 pikeperch (Stizostedion lucioperca). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 49, No. 5, pp: 894-902.
7
Caruso, G.; Denaro, M.G.; Mancari, F.; Genovese, L. and Maricchiolo, G., 2011. Response to short term starvation of growth, haematological, biochemical and non-specific immune parameters in European sea bass (Dicentrachus labrax) and blackspot sea bream (Pagellus bogaraveo). Environmental Research. Vol. 72, pp: 46-52.
8
Carvalho, W.F., 1994. Tecnicas medicas de hematologia e imuno-hematologia. coopmed editora, brazil. denaro, response to short term starvation of growth, haematological, biochemical and non-specific immune parameters in european sea bass (Dicentrarchus labrax) and blackspot sea bream (Pagellus bogaraveo). Environmental Research. Vol. 72, pp: 46-52.
9
Dorafshan, S.; Kalbassi, M.; Pourkazemi, B.M.; Amiri, S. and Karimi, S., 2008. Effects of triploidy on the Caspian salmon Salmo trutta caspius haematology. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 34, No. 3, pp: 195-200.
10
Erdman, J., 1988. The physiologic chemistry of carotenes in man. Clinical Nutrition. Vol. 7, No. 3, pp: 101-105.
11
Friedrich, M. and Stepanowska, K., 2000. Effects of intensive culture and feeding isoprotein diets with different fat and carbohydrate contents on cortisol, total protein and protein fractions contents, AspAT and A1AT activities, and body composition and weight increments in carp (Cyprinus carpio L.) flngerlings. Ichthyological Research. Vol. 30, No. 1, pp: 90-100.
12
Hardy, K.; Torrissen, O.R.; Shearer, T.and Stone,F., 1990. Effects of dietary canthaxanthin level and lipid level on apparent digestibility coefficients for canthaxanthin in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 88, No. 3, pp: 351-362.
13
Houston, A., 1990. Blood and circulation. Methods for Fish Biology. Vol. 19, pp: 273-334.
14
Jobling, M., 2010. Are compensatory growth and catch-up growth two sides of the same coin? .Aquaculture International. Vol. 18, pp: 501- 510.
15
Hussain, M.M.; Li, X. and Dincer, I., 2006. Mathematical modeling of planar solid oxide fuel cells. Journal of Power Sources. Vol. 161, No. 2, pp: 1012-1022.
16
Jyonouchi, H.; Sun, Y.; Tomita, S. and Gross, M.D., 1995. Astaxanthin, a carotenoid without vitamin a activity, augments antibody response in cultures including t-helper cell clones and suboptimal doses of antigen. The Journal of Nutrition. Vol. 125, No. 10, pp: 24-83.
17
Kamara, S.K., 1966. Effect of starvation and refeeding on some liver and blood constituents of Atlantic cod (Gadus morhua L.). Fish. Reserch. Vol. 27, pp: 975- 982.
18
Kiron, V.; Watanabe, T.; Fukuda, H.; Okamoto, N. and Takeuchi, T., 1995. Protein nutrition and defence mechanisms in rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Biochemistry and Physiology. Vol. 111, pp: 351-359.
19
Kulkari, R.S. and Barad, V.S., 2015. Effect of starvation on haematological and serum biochemical changes in the fresh water fish, notopterus notopterus. International Journal of Innovative Studies in Aquatic Biology and Fisheries. Vol. 1, pp: 24-29.
20
Lakshman, M.; Ghosh, P. and Liu, Q.H., 1995. Long-term ethanol exposure impairs glycosylation of both n-and o-glycosylated proteins in rat liver. Metabolism. Vol. 44, No. 7, pp: 890-898.
21
Liu, Y.H.; Liu, W.S. and Su, Y.F., 2012. Aggregation of stabilized TiO2 nanoparticle suspensions in the presence of inorganic ions. Environmental Toxicology and Chemistry. Vol. 31, No. 8, pp: 1693-1698.
22
NRC. 2011. Nutrient requirements of fish and shrimp. National Academies. Washington, DC.
23
Park, I.S.; Hur, J.W. and Choi. J.W., 2012. Hematological responses, survival and respiratory exchange in the olive flounder, Paralichthys olivaceus, during starvation. Asian Australas Journal of Animal Sciences. Vol. 25, pp: 1276-1284.
24
Sattari, M., 2002. Ichthyology (1): Anatomy and Physiology. Haghshenass publication. Tehran, Iran.
25
Shahsavani, D.; Vossoghi, Gh. and Khazraenia, P., 2001. Determination of some blood parameters fingerling sturgeon (Acipenser stellatus and A. persicus) in Gilan province. Pajouhesh and Sazandegi. Vol. 50, pp: 14-18.
26
Smirnov, L.P.; Sukhovskaya, I.V. and Nemova, N.N., 2005. Effects of environmental factors on low-molecular-weight peptides of fishes. Russian Journal of Ecology. Vol. 36, No. 1, pp: 41-47.
27
Torrissen, O.J.; Hardy, R.W.; Shearer, K.D.; Scott, T.M. and Stone, F.E., 1996. Effect of dietray lipid on apparent digestibility coefficients for canthaxanthin in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 88, No. 3, pp: 351-362.
28
Yang, H.; Mu, X.; Luo, D.; Hu, Y.; Song, H.; Liu, C. and Luo, J., 2012. Sodium taurocholate, a novel effective feed additive for promoting absorption and pigmentation of astaxanthin in blood parrot (Cichlasoma synspilum♀× Cichlasoma citrinellum♂). Aquaculture. Vol. 350, pp: 42-45.
29
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر سطوح مختلف کورکومین موجود در گیاه زردچوبه (Curcuma longa) جیره بر عملکرد رشد و رنگ پذیری پوست ماهی اسکار Astronotus ocellatus (Agassiz, 1831)
به منظور مطالعه تاثیر سطوح مختلف کورکومین موجود در گیاه زردچوبه بر عملکرد رشد و رنگ پذیری ماهی اسکار،150 قطعه ماهی با میانگین وزن اولیه 0/25±5/1 گرم و طول متوسط 0/36±6/25 سانتی متر به طور تصادفی به 5 گروه تقسیم شده و به مدت 56 روز نگه داری وبا جیره های مختلف تغذیه شدند. گروه شاهد غذای تجاری فاقد کورکومین (C0) و سایرگروه ها به ترتیب با 5 ( C15) 15 ,(C10) 10 ,(C5) و 20 (20 C) گرم کورکومین در هر کیلوگرم جیره تجاری تغذیه شدند. شاخص های رشد تیمارهای آزمایشی هر دو هفته یک بار اندازه گیری شدند. نتایج نشان داد بین تیمارهای C0 و C5 از لحاظ وزن نهایی و نرخ رشد ویژه تفاوت معنی دار آماری وجود دارد (0/05>P). بیش ترین وزن نهایی و هم چنین کم ترین ضریب تبدیل غذایی در تیمار C5 مشاهده شد. تفاوت معنی داری در بازده پروتئین و چربی بین تیمارهای C5 و C20 مشاهده شد (0/05>P) به طوری که بیش ترین مقدار آن ها در تیمار C20 مشاهده شد. نتایج حاصل از اندازه گیری میزان کورکومین ذخیره شده در پوست نشان داد میزان کورکومین تیمار C20 به طور معنی داری نسبت به تیمار C0 بیش تر بود (0/05>P). نتایج تحقیق کنونی نشان داد که استفاده از 5 گرم کورکومین در جیره غذایی باعث بهبود عملکرد رشد در ماهی اسکار می شود و هم چنین استفاده از 15 گرم کورکومین در جیره غذایی آن ها باعث رنگپذیری بهینه در این ماهیان می شود.
http://www.aejournal.ir/article_88258_72687463f78985c54103cb118b16d1bc.pdf
2018-12-22
415
422
کورکومین
رنگ پذیری
رشد
ماهی اسکار
Astronotus ocellatus
راضیه
نظری
nazari.razie@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران، صندوق پستی: 1144
AUTHOR
میر مسعود
سجادی
mmsajjadi@hotmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران، صندوق پستی: 1144
LEAD_AUTHOR
بهرام
فلاحتکار
falahatkar@guilan.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران، صندوق پستی: 1144
AUTHOR
بیک زاده، آ.؛ ایمان پور، م. و تقی زاده، و.، 1394. اثر بلندمدت کورتیزول خوراکی بر مقاومت به تنش شوری در بچه ماهیان کپور معمولی (Cyprinus carpio). یافته های نوین در علوم زیستی. سال 2، شماره 2، صفحات 103 تا 112.
1
رفیعی، غ.؛ نیسی، ع.؛ نعمت اللهی، م. و رضوی، ه.، 1394. تاثیر جیره غذایی حاوی کانتازانتین استخراج شده از باکتری Dietzia natronolimmaea-HSI در بهبود شاخص های رشد و ایمنی ماهی گرین ترور (Andinoacara rivulatus). مجله پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. سال 3، شماره 3، صفحات 95 تا 105.
2
صیدگر، م.؛ حافظیه، م. و نکوئی فرد، ع.، 1394. مقایسه تاثیر تغذیه با پریان میگو Phallocryptus spinosa و آرتمیا Artemia urmiana بر مقدار رنگدانه های کارتنوئیدی پوست ماهی گلدفیش (Carassius auratus). مجله علمی شیلات ایران. سال 24، شماره 1، صفحات 13 تا 24.
3
عظیمی، آ.؛ تقی زاده، و. و ایمان پور، م.، 1392. تاثیر رنگدانه های طبیعی (پودر فلفل دلمه و گوجه فرنگی) در تغییرپذیری رنگ ماهی فلاور هورن (Cichlasoma sp). مجله پژوهش علوم و فنون دریایی. سال 11، شماره 1، صفحات 19 تا 24.
4
عقدا، م.؛ وثوقی، ع. و متین فر، ع.، 1395. بررسی اثر پوست سبز گردو بر رنگ پذیری ماهی اسکار (Astronotus ocellatus). مجله پژوهش علوم و فنون دریایی. سال 11، شماره 1، صفحات 1 تا 11.
5
مشعل چی، م.؛ علیشاهی، م.؛ جواهری بابلی، م. و حجازی، م.، 1389. مقایسه اثر آستاگزانتین و جلبک دونالیلا Dunaliella salina بر رنگ پوست ماهی اسکار سفید (Astronotus ocellatus). مجله بیولوژی دریا. سال 2، شماره 6، صفحات 75 تا 83.
6
Akdemir, F.; Orhan, C.; Tuzcu, M.; Sahin, N.; Juturu, V. and Sahin, K., 2016. The efficacy of dietary curcumin on growth performance, lipid peroxidation and hepatic transcription factors in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) reared under different stocking densities. Aquaculture Research. (In press)
7
Behera T.; Swain, P.; Sahoo, S.K.; Mohapatra, D. and Das, B.K., 2011. Immunostimulatory effects of curcumin in fish )Labeo rohita(. Indian Journal of Natural Products and Resources. Vol. 2, No. 2, pp: 184-188.
8
Bekcan, S.; Dogankaya, L. and Cakirogollari, G.C., 2006. Growth and body composition of European catfish (Silurus glanis) fed diet containing different percentages of protein. The Israeli Journal of the Aquaculture- Bamidgeh. Vol. 58, pp: 137-142.
9
Bellio, P.; Brisdelli, F.; Perilli, M.; Sabatini, A.; Bottoni, C.; Segatore, B.; Setacci, D.; Amicosante, G. and Celenza, G., 2014. Curcumin inhibits the SOS response induced by levofloxacin in Escherichia coli. Phytomedicine.Vol. 21, No. 4, pp: 430-434.
10
Boonla, O.; Kukongviriyapan, U.; Pakdeechote, P.; Kukongviriyapan, V.; Pannangpetch, P.; Prachaney, P. and Greenwald, S.E., 2014. Curcumin improves endothelial dysfunction and vascular remodeling in 2K-1C hypertensive rats by raising nitric oxide availability and reducing oxidative stress. Nitric Oxide. Vol. 42, pp: 44-53.
11
Bureau, D.P.; Hua, K. and Cho, C.Y., 2006. Effect of feeding level on growth and nutrient deposition in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum) growing from 150 to 600 g. Aquaculture Research. Vol. 37, No. 11, pp: 1090-1098.
12
Cleary, K. and Mcfeeters, R.F., 2006. Effects of oxygen and turmeric on the formation of oxidative aldehydes in fresh-pack dill pickles. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 54, No. 9, pp: 3421-3427.
13
Cui, H.; Liu, B.; Ge, X.P.; Xie, J.; Xu, P. and Zhou, Q., 2013. Effects of dietary curcumin on growth performance, biochemical parameters, HSP70 gene expression and resistance to Streptococcus iniae of juvenile Gift Tilapia, (Oreochromis niloticus). The Israeli Journal of Aquaculture-Bamidgeh. Vol. 66, pp: 986-996.
14
Farhangi, B.; Alizadeh, A.M.; Khodayari, H.; Khodayari, S.; Dehghan, M.J.; Khori, V.; Heidarzadeh, A.; Khaniki, M.; Sadeghiezadeh, M. and Najafi, F., 2015. Protective effects of dendrosomal curcumin on an animal metastatic breast tumor. European Journal of Pharmacology. Vol. 758, pp: 188-196.
15
Francis, G.; Makkar, H.P.S. and Becker, K., 2001. Effects of Quillaja saponins on growth, metabolism, egg production and muscle cholesterol in individually reared Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology. Vol. 129, No. 2, pp: 105-114.
16
Fu, Y.; Gao, R.; Cao, Y.; Guo, M.; Wei, Z.; Zhou, E.; Li, Y.; Yao, M.; Yang, Z. and Zhang, N., 2014. Curcumin attenuates inflammatory responses by suppressing TLR4 mediated NF-κB signaling pathway in lipopolysaccharide induced mastitis in mice. International Immuno pharmacology. Vol. 20, No. 1, pp: 54-58.
17
Ghosh, S.; Sinha, A. and Sahu, C., 2008. Dietary probiotic supplementation in growth and health of live bearing ornamental fishes. Aquaculture Nutrition. Vol. 14, No. 4, pp: 289-299.
18
Jiang, J.; Wu, X.Y.; Zhou, X.Q.; Feng, L.; Liu, Y.; Jiang, W.D.; Wu, P. and Zhao, Y., 2016. Effects of dietary curcumin supplementation on growth performance, intestinal digestive enzyme activities and antioxidant capacity of crucian carp (Carassius auratus). Aquaculture. Vol. 463, pp: 174-180.
19
Kop, A. and Durmaz, Y., 2008. The effect of synthetic and natural pigments on the colour of the cichlids (Cichlasoma severum sp). Aquaculture International. Vol. 16, No. 2, pp: 117-122.
20
Manju, M.; Akbarsha, M.A. and Oommen, O.V., 2012. In vivo protective effect of dietary curcumin in fish Anabas testudineus (Bloch). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 38, No. 2, pp: 309-318.
21
Perrone, D.; Ardito, F.; Giannatempo, G.; Dioguardi, M.; Troiano, G.; Lo Russo, L.; De Lillo, A.; Laino, L. and Lo Muzio, L., 2015. Biological and therapeutic activities, and anticancer properties of curcumin. Experimental and Therapeutic Medicine. Vol. 10, No. 5, pp: 1615-1623.
22
Richards, J.G.; Wang, Y.S.; Brauner, C.J.; Gonzalez, R.J.; Patrick, M.L.; Schulte, P.M.; Choppari-Gomes, A.R. and Almeida-Val, V.M., 2007. Metabolic and ionoregulatory responses of the Amazonian cichlid, Astronotus ocellatus, to severe hypoxia. Journal of Comparative Physiology. Vol. 177, No. 3, pp: 361-374.
23
Ruby, A.J.; Kuttan, G.; Babu, K.D.; Rajasekharan, K.N. and Kuttan, R., 1995. Anti-tumour and antioxidant activity of natural curcuminoids. Cancer Letters. Vol. 94, No. 1, pp: 79-83.
24
Shapoori, M.; Ghiasvand, Z. and Jamili, S., 2012. The study of synthetic and natural pigments on the colour of the Albino Oscar (Astronotus ocellatus). International Journal of Marine Science and Engineering. Vol. 2, No. 3, pp: 203-206.
25
Shi, X.; Zheng, Z.; Li, J.; Xiao, Z.; Qi, W.; Zhang, A.; Wu, Q. and Fang, Y., 2015. Curcumin inhibits Aβ-induced microglial inflammatory responses in vitro: Involvement of ERK1/2 and p38 signaling pathways. Neuroscience Letters. Vol. 594, pp: 105-110.
26
Toda, O.; Miyase, T.; Arichi, H.; Tanizawa, H. and Takino, Y., 1985. Natural antioxidants. III. Antioxidative components isolated from rhizome of (Curcuma longa). Chemical and Pharmaceutical Bulletin. Vol. 33, No. 4, pp: 1725-1728.
27
Wang, Y.J.; Chien, Y.H. and Pan, C.H., 2006. Effects of dietary supplementation of carotenoids on survival, growth, pigmentation, and antioxidant capacity of characins (Hyphessobrycon callistus). Aquaculture. Vol. 261, No. 2, pp: 641-648.
28
Wen, Z.P.; Zhou, X.Q.; Feng, L.; Jiang, J. and Liu, Y., 2009. Effect of dietary pantothenic acid supplement on growth, body composition and intestinal enzyme activities of juvenile Jian carp (Cyprinus carpio var. Jiang).Aquaculture nutrition. Vol. 15, pp: 470-476.
29
Xia, S.L.; Ge, X.P.; Liu, B.; Xie, J.; Miao, L.H.; Ren, M.C.; Zhou, Q.L.; Zhang, W.X.; Jiang, X. J.; Chen, R.L. and Pan, L.K., 2015. Effects of supplemented dietary curcumin on growth and non-specific immune responses in juvenile Wuchang bream (Megalobrama amblycephala). The Israeli Journal of Aquaculture-Bamidgeh. Vol. 67, pp: 1-12.
30
Zhongze, H.; Jiufeng, Y. and Zhijing, T., 2003. Effect of curcumin on the growth and activity of digestive enzyme in grass carps (Ctenopharyngodon idella). Cereal and Feed Industry. Vol. 51, No. 11, pp: 75-84.
31
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه فون مگس های خانواده (Lauxaniidae (Insecta: Diptera در منطقه طالقان
مگسهای Lauxaniidae با داشتن حدود 1800 گونه توصیف شده یکی از بزرگ ترین و متنوع ترین خانواده های دوبالان به حساب می آیند. اغلب گونه های این خانواده در مناطق جنگلی، روی درختچه ها، درختان و برگ ها فعالیت می کنند و اغلب در مرحله لاروی پوسیده خوار هستند و در زیر برگهای افتاده، علف های در حال پوسیدن، زیر پوست تنه درختان در حال تجزیه و در لانه پرندگان یافت می شوند. تا قبل از این تحقیق 32 گونه از این مگس ها از ایران گزارش شده بود. طی این تحقیق در سال های 1395 و 1396 روی فون مگس خانواده Lauxaniidae در منطقه طالقان (استان های البرز و قزوین)، 10 گونه از پنج جنس (Homoneura sp.، Minettia fasciata، Minettia hyrcanica، Minettia bulgarica، Calliopum caucasicum، Sapromyza afghanica، Sapromyza biordinata، Sapromyza hermonensis، Eusapromyza martinekiوEusapromyza multipunctata) از این خانواده از مکان های مختلف منطقه جمع آوری و شناسایی گردید. از میان گونه های مذکور، گونه Sapromyza hermonensisبرای اولین بار از ایران گزارش می گردد.
http://www.aejournal.ir/article_88291_04d1a4cc9972e45018797cb64269489a.pdf
2018-12-22
423
428
فونستیک
دوبالان
Lauxaniidae
طالقان
محمد
جواد ایمنی
mjavad.emeni@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
سعید
محمد زاده نمین
saeedmn2005@gmail.com
2
گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
LEAD_AUTHOR
معصومه
مهدوی اورتاکند
masumehmahdavi@gmail.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
کریمی،م.،1395. مطالعه فونستیک مگس های خانواده Lauxaniidae در استان گیلان، موسسه آموزش عالی مهرگان.
1
Amorim, D.S.; Silva, V.C. and Balbi, M.I.P.A., 2002. Estado do Conhecimento dos Diptera neotropicais. In Proyecto de Red Iberoamericana de Biogeografiay Entomologia Sistemática PrIBES. Edited by C. Costa, S.A. Vanin, J.M. Lobo & A. Melic. Zaragoza: Sociedad Entomológica Aragonesa and Cyted. pp: 29-36.
2
Gilasian, E., 2008. The first report of one genus and two species of Lauxaniidae (Diptera) from Iran. Journal of Entomological Society of Iran. Vol. 27, No. 2, pp: 15-16.
3
Khaghaninia, S.; Zarghani, E. and Shatalkin, A., 2014. Preliminary study of Lauxaniid flies (Diptera: Luxaniidae) of Horand in the East Azerbaijan province with two new records for the Iranian fauna. Journal of Crop Protection. Vol. 3, No. 4, pp: 523-529.
4
Lee, H.S. and Han, H.Y., 2015. Nine species of the family Lauxaniidae (Diptera, Lauxanioidea) new to Korea. Animal Systematics, Evolution and Diversity. Vol. 31, No. 4, pp: 266-276.
5
Majnon Jahromi, B.; Dousti, A.F.; Saghaei, N. and Van der Weele, R., 2013. Iranian Lauxaniidae (Diptera, Brachycera): new records and a preliminary checklist. Biologiezentrum Linz/Austria. Vol. 45, No. 2, pp: 2005-2009.
6
Merz, B., 2003. The Lauxaniidae (Diptera) described by C. F. Fallen with description of a misidentified species of Homoneura van der Wulp. Insect Systematics Evolution. Vol. 34, No. 3, pp: 345-360.
7
Merz, B., 2004. A revision of the Minettia fasciata species group (Diptera, Lauxaniidae). Revue Suisse de Zoologie. Vol. 111, No. 1, pp: 183-211.
8
Miller, R.M., 1977. Ecology of Lauxaniidae (Diptera: Acalyptratae), I. Old and new rearing records with biological notes and discussion. Annals of the Natal Museum. Vol. 23, pp: 215-238.
9
Papp, L., 1984. Family Lauxaniidae. In Catalogue of Palaearctic Diptera, Vol. 9. Edited by A. Soos and L. Papp. Akadémiai Kiado, Budapest, pp: 193-213.
10
Papp, L., 1985. Acalyptrate flies (Diptera) from sifted materials in the Geneva Museum. Revue Suisse De Zoologie. Vol. 92, No. 2, pp: 481-507.
11
Schacht, W.; Kurina, O.; Merz, M. and Gaimari, S., 2004. Zweiflügler aus Bayern XXII (Diptera: Lauxaniidae, Chamaemyiidae). Entomofauna. Vol. 25, No. 3, pp: 41-80.
12
Shatalkin, A.I., 1996. New and little known species of flies of Lauxaniidae and Strongylophthalmyiidae (Diptera). Russian Entomological Journal. Vol. 4, pp: 145-157.
13
Shatalkin, A.I., 1998. New and little-known Lauxaniidae (Diptera) from Asia. Russian Entomological Journal. Vol. 7, pp: 209-218.
14
Shatalkin, A.I., 2000. Keys to the Palaearctic flies of the family Lauxaniidae (Diptera). Zoologicheskie Iissledovania. Vol. 5, pp: 1-102.
15
Shewell, G.E., 1987. Family Lauxaniidae. In A Catalogue of the Diptera of the Oriental Region, Volume III: Suborder Cyclorrhapha (excluding Division Aschiza). Edited by M.D. Delfinado and D.E. Hardy. The Univ. Press of Hawaii, Honolulu. pp: 182-214.
16
Silva, V.C. and Mello, R.L., 2008. Occurrence of Physoclypeus farinosus Hendel (Diptera: Lauxaniidae) in Flowerheads of Asteraceae (Asterales). Neotropical Entomology. Vol. 37, No. 1, pp: 92-96.
17
Yarom, I., 1990. A review of the genus Sapromyza Fallén in Israel with remarks on S. (Sapromyzosoma) quadripunctata (Linneaus [sic]) (Diptera: Lauxaniidae). Entomologica Scandinavica. Vol. 21, pp: 289-304.
18
ORIGINAL_ARTICLE
تغییرات جمعیت و تنوع زیستی موجودات خاکزی (هزارپایان) در جنگل های زاگرس (مطالعه موردی: شهرستان ایلام)
پژوهش حاضر، به مدت یکسال (1394-1395) در جنگل های شهرستان ایلام به منظور بررسی تغییرات تراکم جمعیت و تنوع زیستی موجودات خاکزی شامل صدپایان و هزارپایان (Arthropoda: Myriapoda) انجام گرفت. بدین منظور نمونه برداری از خاک سه منطقه گچان، مانشت و قلارنگ، در طی فصول مختلف سال صورت پذیرفت. نمونه های خاک پس از ثبت مشخصات محل، به آزمایشگاه منتقل شدند و با استفاده از قیف برلیز نسبت به جداسازی صدپایان و هزارپایان اقدام گردید. در این بررسی در مجموع، تعداد 730 نمونه از صدپایان و هزارپایان از منطقه حفاظت شده مانشت و قلارنگ جمع آوری و شمارش گردید که نمونه های جمع آوری شده متعلق به سه خانواده Dignathodontidae (گونه Henia sp.)، Scolopendridae (گونه Scolopendra cingulata) و Julidae (گونه های Cylindroiulus sp. و Amblyiulus sp.) بودند. حداکثر تراکم جمعیت صدپایان و هزارپایان در هر سه منطقه مورد نمونه برداری در فصل بهار دیده شد و تراکم جمعیت صدپایان و هزارپایان (تعداد در مترمربع) در کوه گچان (147 و 136) نسبت به کوه های مانشت (111 و 128) و قلارنگ (92 و 131) بالاتر بود. در اواخر پاییز، تراکم جمعیت به طور معنی داری در هر سه منطقه کاهش یافت. براساس نتایج حاصل از تجزیه واریانس، تأثیر فصول مختلف سال بر جمعیت صدپایان و هزارپایان در هر سه منطقه در سطح یک درصد معنی دار می باشد. با توجه به پوشش گیاهی متنوع در منطقه، مقدار شاخص های شانون– وینر و سیمپسون در هر سه منطقه نمونه برداری شده، بالا و در حد مطلوب بود. هم چنین نتایج مربوط به شاخص یکنواختی شانون نشان داد که مقدار این شاخص برای هزارپایان در هر سه منطقه نمونه برداری شده بیش تر از صدپایان می باشد. با توجه به نتایج این تحقیق و نظر به این که هزارپایان اهمیت زیادی در زنجیره های غذایی خاک و حفظ تعادل طبیعی در جنگل ها را دارند توصیه می شود برنامه های حفاظت از تنوع زیستی اکوسیستم های جنگلی مورد توجه و نظر بیش تری قرار گیرند.
http://www.aejournal.ir/article_88292_e5bd96daddf118e3ec8d5c482611047a.pdf
2018-12-22
429
434
تراکم جمعیت
صدپایان
هزارپایان
جنگل های زاگرس
ایلام
محمد
عباسی
m.abbasi3966@gmail.com
1
گروه علوم جنگل، دانشکده کشاورزی، دانشگاه ایلام، ایلام، ایران
AUTHOR
جواد
میرزایی
mirzaei.javad@gmail.com
2
گروه علوم جنگل، دانشکده کشاورزی، دانشگاه ایلام، ایلام، ایران
LEAD_AUTHOR
مجید
میراب بالو
majid.mirab@gmail.com
3
گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه ایلام، ایلام، ایران
AUTHOR
Akkari, N.; Stoev, P.; Enghoff, H. and Nouira, S., 2009. The millipede order Julida (Myriapoda: Diplopoda) in Tunisia, with an overview of the North African Species Soil. Organisms. Vol. 81, pp: 452-488.
1
Bartlett-Healy, K.; Unlu, I.; Obenauer, P.; Hughes, T.; Healy, S.; Crepeau, T.; Farajollahi, A.; Kesavaraju, B.; Fonseca, D.; Schoeler, G.; Gaugler, R. and Strickman, D., 2012. Larval mosquito habitat utilization and community dynamics of Aedes albopictus and Aedes japonicus (Diptera: Culicidae). J of Medical Entomology. Vol. 49, pp: 813-824.
2
Chezhian, Y. and Prabakaran, S., 2016. Diversity of millipedes (Myriapoda: Diplopoda) In Yelagiri hills, Eastern Ghats, Vellore district, Tamil Nadu. International Journal of Fauna and Biological Studies. Vol. 3, pp: 91-97.
3
Grgič, T. and Kos, I., 2009. Centipede catch in pitfall traps with leading boards. Acta Biologica Slovenica. Vol. 52, pp: 107-113.
4
Haacker, U., 1968. Deskriptive, experimentelle und vergleichende Untersuchungen zur Autıkologie rhein-mainischer Diplopoden. Oecologia. Vol. 1, pp: 87-129.
5
Heydari, M.; Abdi, T.; Mirab-balou, M.; Mirzaei, J. and Zabihollahi, S., 2017. Potential of soil mesofauna in reflection of site conditions for seed-origin oak regeneration in Zagros forests (case study: Dalab, Ilam Province). J of Forest & Wood Products. Vol. 70, pp: 281-291 (in Persian).
6
Heydari, M.; Poorbabaei, H.; Bazgir, M.; Salehi, A. and Eshaghirad, J., 2014. Earthworms as indicators for different forest management types and human disturbance in Ilam oak forest, Iran. Folia Forestalia Polonica. Vol. 56, pp: 121-134.
7
Hillel, D. and Rosenzweig, C., 2005. The role of biodiversity in agronomy. Adv. Agron. Vol. 88, pp: 1-34.
8
Hopkin, S.P. and Read, H.J., 1992. The Biology of Millipedes. Oxford University Press. 248 p.
9
Johnson, N.F. and Triplehorn, C.A., 2004. Borror and Delong’s introduction to the study of insects. Thomson Press, California.
10
Kania, G. and Klapec, T., 2012. Seasonal activity of millipedes (Diplopoda) their economic and medical signicance. Annals of Agricultural and Environmental Medicine. Vol. 19, pp: 646-650.
11
Masse, P.S.M.; Nzoko Fiemapong, A.R.; VandenSpiegel, D. and Golovatch, S.I., 2017. Diversity and distribution of millipedes (Diplopoda) in the Campo Ma'an National Park, southern Cameroon. African J of Ecology, Vol. 155, pp: 1-8.
12
Mehrafrooz Mayvan, M. and Shayanmehr, M., 2015a. An investigation of soil Chilopoda from Semeskandeh forest (Sari, Mazandaran, Iran). Taxonomy and Biosystematics. Vol. 7, pp: 1-12 (in Persian).
13
Mehrafrooz Mayvan, M. and Shayanmehr, M., 2015b. A study on faunestic, and biodiversity and population dynamics of edaphic Millipedes (Diplopoda) during different seasons in Semeskandeh forests, Mazandaran Province, Iran. Journal of Plant Protection. Vol. 29, pp: 113-122 (in Persian).
14
Mirab-balou, M.; Pourian, H.R. and Pishevar, S., 2013. Entomology and pest management (Second Edition). Marze Danesh Press, Tehran-Iran. 206 p. (In Persian).
15
Paknia, O.; Kami, H.Q. and Golnik Mahzar, E., 2005. Reports of new fauna of Chilopoda in Iran. 13th International Conference and 1st International Conference on Iranian Biology, Guilan University, Rasht.Iran (in Persian).
16
Reisi, S.; Jalali, S.G., and Espahbodi, K., 2011. An investigation of genetic variation of (Quercus castaneafolia C.A. Mey) in Neka and Noor forest of Mazandaran using peroxides activities. Taxonomy and Biosystematics. Vol. 3, pp: 11-22 (in Persian).
17
Sayad, E.; Hosseini, S.M.; Hosseini, V. and Salehe Shooshtari, M.H., 2012. Plantations in Dez River Floodplain Influence Soil Macrofauna Differently. Journal of Water and Soil, Vol. 26, pp: 700-707 (in Persian).
18
Staley, J.T.; Hodgson, C.J.; Mortimer, S.R.; Morecroft, M.D.; Masters, G.J.; Brown, V.K. and Taylor, M.E., 2007. Effect of summer rainfall manipulations on the abundance & vertical distribution of herbivorous soil macro invertebrates. European Journal of Soil Biology. Vol. 43, pp: 189-198.
19
Tuf, I.H. and Tufova, J., 2008. Proposal of ecological classification of centipede, millipede & terrestrial isopod faunas for evaluation of habitat quality in Czech Republic. Casopis Slezskeho Zemskeho Muzea Opava. Vol. 57, pp: 37-44.
20
Voigtländer, K., 2005. Habitat preferences of selected central European centipedes. Peckiana. Vol. 4, pp: 163-179.
21
Wytwer, J.; Golovatch, S.I. and Penev, L., 2009. Variation in millipede (Diplopoda) assemblages in oak woodlands of the Eastern Europe Plain. Organisms, Vol. 81, pp: 791-813.
22
Yahyapoor, E. and Shayanmehr, M., 2013. Introduction of some Entomobryidae species (Collembola) from different Caspian regions. Taxonomy and Biosystematics. Vol. 5, pp: 15-24 (in Persian).
23
ORIGINAL_ARTICLE
تنوع زیستی دوجورپایان زیرزمینی جنس Niphargus در ایران با معرفی ثبت جدید گونه N. hosseiniei
اعضای جنس زیرزمینی 1849Schiödte, Niphargus در آبهای زیرزمینی و یا آبهای مرتبط با محیطهای زیرزمینی نظیر چشمهها زندگی میکنند. اعضای این گروه یکی از غنیترین جنسهای دوجورپایان آب شیرین از نظر تعداد گونه (بیش از 300 گونه و زیر گونه) در جهان هستند که در غرب پاله آرکتیک پراکنش دارند. ایران به عنوان محدوده شرقی جنس Niphargus مشخص میشود و تاکنون 17 گونه از این جنس در ایران یافت شده است که بهجز گونه N. valachicus، سایر گونهها بومی ایران میباشند. در این مطالعه، تنوع و پراکنش اعضای این جنس در ایران و صفات تشخیصی مهم هر گونه بررسی و ثبت جدیدی از گونه N. hosseiniei در اطراف روستای بیلوار شهر کرمانشاه گزارش میشود. نقشه توزیع جغرافیایی گونهها با نرم افزار Arc GIs ترسیم گردید. اکثر گونههای این جنس از ایران در 5 سال گذشته معرفی شدهاند و انتظار میرود در آیندهای نزدیک گونههای بیشتری به فون زیرزمینی ایران اضافه گردد.
http://www.aejournal.ir/article_85928_6bbf138df8bf07d92c19f15e2fca48aa.pdf
2018-12-22
435
442
تنوع زیستی
Niphargus
آب زیرزمینی
ثبت جدید
ایران
سمیه
اسمعیلی رینه
sesmaeili@razi.ac.ir
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران
LEAD_AUTHOR
Akbulut, M.; Bat, L.; Sezgin, M. and Çulha, M., 2001. On the occurrence of Niphargus valachicus Dobrenau & Manolache, 1933 (Amphipoda, Gammaridae) in the Western Black Sea Region of Turkey. Turkish Journal of Zoology. Vol. 25, No. 3, pp: 235-239.
1
Barnard, J. and Barnard, C.M., 1983. Freshwater amphipoda of the world I. evolutionary pattern, II. Handbook and Bibliography. Hayfield Associates, Mt. Vernon, Virginia. 830 p.
2
Bay, L.K. and Caley, M.J., 2011. Greater genetic diversity in spatially restricted coral reef fishes suggests secondary contact among differentiated lineages. Diversity. Vol. 3, pp: 483-502.
3
Boutin, C. and Coineau, N., 2000. Evolutionary rates and phylogenetic age in some stygiobiontic specie in Subterranean Ecosystems, edited by H. Wilkens, D.C. Culver and W. Humphreys. Amsterdam and New York, Elsevier. 410 p.
4
Brusca, R.C. and Brusca, G.J., 2003. Invertebrates. 2rd Ed. Sinauer Associates. Sunderland, MA. 935 p.
5
Christensen, V. and Pauly, D., 1992. Ecopath II-software for balancing steady state ecosystem models and calculating network characteristics. Ecological Modelling. Vol. 61, No. 1, pp: 169-185.
6
Culver, D., 1982. Cave life, evolution and ecology. Harvard University Press. Cambridge. Massachusetts. 189 p.
7
Dobreanu, E. and Manolache, C., 1933. Beitrag zur kenntnis der Amphipoden Rumniens. Notationes Biologicae Bucarest. Vol. 1, pp: 103-108.
8
Endler, J.A., 1986.Natural selection in the wild. Princeton University Press. USA. 336 p.
9
Esmaeili-Rineh, S. and Sari, A., 2013. Two new species of Niphargus Schiödte, 1849 (Crustacea: Amphipoda: Niphargidae) from two caves in Iran. Journal of Natural History. Vol. 47, No. 41, pp: 2649-2669.
10
Esmaeili-Rineh, S.; Sari, A. and Fišer, C., 2015a. Making future taxonomy of Niphargus (Crustacea: Amphipoda: Niphargidae) in the Middle East easier: DELTA database of Middle East species with description of four new species from Iran. Zootaxa. Vol. 4020, pp: 401-430.
11
Esmaeili-Rineh, S.; Sari, A.; Delić, T.; Moškrič, A. and Fišer, C., 2015b. Molecular phylogeny of the subterranean genus Niphargus (Crustacea: Amphipoda) in the Middle East: a comparison with european niphargids. Zoological Journal of Linnean Society. Vol. 175, No. 4, pp: 812-826.
12
Esmaeili-Rineh, S.; Heidari, F.; Fišer, C. and Akmali, V., 2016. Description of new endemic species of the genus Niphargus Schiödte, 1849 (Amphipoda: Niphargidae) from a karst spring in Zagros Mountains in Iran. Zootaxa. Vol. 4126, No. 3, pp: 338-350.
13
Esmaeili-Rineh, S.; Mirghaffari S.A. and Sharifi, M., 2017a. The description of a new species of Niphargus from Iran based on morphological and molecular data. Subterranean Biology. Vol. 22, pp: 43-58.
14
Esmaeili-Rineh, S.; Sari, A.; Fišer, C. and Bargrizaneh, Z., 2017b. Completion of molecular taxonomy: description of four amphipod species (Crustacea: Amphipoda: Niphargidae) from Iran and release of database for morphological taxonomy. Zoologischer Anzeiger. Vol. 271, pp: 57-79.
15
Esmaeili-Rineh, S.; Mohammad-Niakan, A.and Akmali, V., 2017c, Niphargus sarii sp. nov. a new subterranean niphargid (Crustacea: Amphipoda) from Iran based on molecular and morphological characters. Acta_Zoologica Academiae Scientiarum. (Accepted)
16
Fišer, C.; Sket, B. and Trontelj, P., 2008. A phylogenetic perspective on 160 years of troubled taxonomy of Niphargus (Crustacea: Amphipoda). Zoologica Scripta. Vol. 37, No. 6, pp: 665-680.
17
Fišer, C.; Trontelj, P.; Luštrik, R. and Sket, B., 2009. Toward a unified taxonomy of Niphargus (Crustacea: Amphipoda): a review of morphological variability. Zootaxa. Vol. 2061, pp: 1-22.
18
Fišer, C.; Zagmajster, M. and Zakšek, V., 2013. Coevolution of life history traits and morphology in female subterranean amphipods. Nordic Society Oikos. Vol. 122, No. 5, pp: 770-778.
19
Flot, J.F.; Dattagupta, S. and Woerheide, G., 2010. Unsuspected diversity of Niphargus amphipods in the chemoautotrophic cave ecosystem of Frasassi, central Italy. BMC Evolutionary Biology. Vol. 10, pp: 171-184.
20
Hekmatara, M.; Sari, A. and Heidary Baladehi, M.H., 2011. Two new Gammarus species (Crustacea: Amphipoda: Gammaridae) from Zagros Mountains, Iran. Zootaxa. Vol. 2894, pp: 39-57.
21
Hekmatara, M.; Zakšek, V.; Heidari, M.B. and Fišer, C., 2013. Two new species of Niphargus Crustacea: Amphipoda) from Iran. Journal of Natural History. Vol. 47, No. 21, pp: 1421-1449.
22
Karaman, G.S. and Ruffo, S., 1986. Amphipoda: Niphargus group (Niphargidae sensu Bousfield, 1982), in Stygofauna Mundi. Edited by Botosaneau, Leiden. E.J. Brill/ Dr Backhuys. pp: 514-534.
23
Karaman, G.S., 1998. First discovery of the family Niphargidae (Gammaridea) in Iran (contribution to the knowledge of the Amphipoda 243). Glasnik Republičkog zavoda zaštite prirode- Prirodnjačkog muzeja Podgorica. Vol. 12, pp: 9-22.
24
Mamaghani-Shishvan, M.; Esmaeili-Rineh, S. and Fišer, C., 2017. An Integrated Morphological and Molecular Approach to A New Species Description of Amphipods in the Niphargidae from Two Caves in West of Iran. Zoological Studies. doi:10.6620/ZS.2017.56-33
25
Papadopoulu, A.; Anastasiou, I. and Vogler, A.P., 2010. Revisiting the insect mitochondrial molecular clock: the midaegean trench calibration. Molecular Biology and Evolution. Vol. 27, pp: 1659-1672.
26
Raeisi, E., 2004. Iran cave and karst, in Encyclopedia of Cave and Karst. edited by J. Gunn, Fitzroy Dearborn. New York, USA. pp: 460-461.
27
Schram, F.R., 1986. Crustacean. Oxford University Press. New York, USA. 660 p.
28
Sket, B., 1999. The nature of biodiversity in hypogean waters and how it is endangered. Biodiversity and Conservation. Vol. 8, pp: 1319-1338.
29
Trontelj, P.; Blejec, A. and Fišer, C., 2012. Ecomorphological convergence of cave communities. Evolution. Vol. 66, pp: 3852-3865.
30
Väinölä, R.; Witt, J.D.S.; Grabowski, M.; Bradbury, J.H.; Jazdzewski, K. and Sket, B., 2008. Global diversity of amphipods (Amphipoda; Crustacea) in freshwater. Hydrobiologia. Vol. 595, pp: 241-255.
31
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثرات استفاده از روغن ریزپوشانی شده در جیره غذایی میگوی بزرگ آب شیرین Macrobrachium rosenbergii بر فاکتورهای رشد، آنالیز تقریبی فیله و برخی از خصوصیات فیزیکی پلت
در این تحقیق تاثیر استفاده از روغنهای ریزپوشانی شده در جیره غذایی میگوی آب شیرین بر پارامترهای رشد و آنالیز تقریبی فیله مورد ارزیابی قرار گرفت. 6 جیره غذایی با میزان پروتئین یکسان (33 درصد) و سه سطح چربی 6، 9 و 12 درصد تهیه شد که در هر سطح چربی دو جیره ساخته شد که در یکی از جیرهها (تیمارهای 1، 3 و 5) از روغن بدون ریزپوشانی استفاده شد و در جیره دیگر (تیمارهای 2، 4 و 6) از روغن ریزپوشانی شده استفاده شد. اضافه وزن و ضریب تبدیل غذایی در سطح چربی 12 درصد بین تیماری که روغن آن ریزپوشانی نشده بود (تیمار 5) با تیمار 6 که روغن آن ریزپوشانی شده بود تفاوت معنیدار (0/05 >P) نشان دادند. همچنین تیمار 6 بیشترین نرخ رشد ویژه و شاخص کارایی پروتئین را دارا بود و بهطور معنیداری (0/05>P) با تیمارهای 1 و 2 تفاوت داشت. اثر سطوح چربی تاثیر معنیداری در فاکتورهای رشد نشان داد اما اثر ریزپوشانی و اثر متقابل (اثر سطوح چربی و اثر ریزپوشانی) معنیداری نبودند (0/05<P). ریزپوشانی کردن در سطح چربی 12 درصد سبب افزایش معنیدار (0/05>P) در چربی فیله شد و اثر سطوح چربی و اثر ریزپوشانی نیز معنیدار بود (0/05>P). فاکتورهای فیزیکی پلت تحت تاثیر معنیدار ریزپوشانی روغن قرار گرفتند (0/05>P). که این تاثیر خصوصاً در سطح چربی 9 و 12 درصد بارزتر بود. درکل ریزپوشانی کردن روغنها در سطح چربی جیره 6 درصد هیچ تاثیر معنیداری بر فاکتورهای رشد، چربی فیله و شاخصهای فیزیکی پلت نداشت.
http://www.aejournal.ir/article_88333_f5db7ea92979f32e0bd20dd32b2bc6fd.pdf
2018-12-22
443
450
چربی فیله
سطوح چربی جیره
فاکتورهای رشد
استحکام پلت
شسته شدن پلت
رضا
اسعدی
ri.asadi@gmail.com
1
دانشکده شیلات و علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، صندوق پستی: 578
LEAD_AUTHOR
عبدالصمد
کرامت امیری
amirkola@yahoo.com
2
دانشکده شیلات و علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، صندوق پستی: 578
AUTHOR
حسین
اورجی
h_ouraji@sanru.ac.ir
3
دانشکده شیلات و علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، صندوق پستی: 578
AUTHOR
سید ولی
حسینی
hosseini.seyedvali@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشگاه تهران، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی کرج، صندوق پستی: 4111
AUTHOR
AOAC (Association of Official Analytical Chemists). 2002. Official Methods of Analysis, 16th edition. AOAC, Arlington, Virginia. 1141 p.
1
Bæverfjord, G.; Refstie, S.; Krogedal, P. and Asgard, T., 2006. Low feed pellet water stability and fluctuating water salinity cause separation and accumulation of dietary oil in the stomach of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 261, pp: 1335-1345.
2
Bautista, M.N.; Subosa, P.F. and Lavilla-Pitogo, C.R., 1992. Effects of antioxidants on feed quality and growth of (Penaeus monodon) juveniles. Journal of Sci. Food Agri. Vol. 60, pp: 55-60.
3
Cavalcanti, W.B., 2004. The effect of ingredient composition on the physical quality of pelleted feeds: a mixture experimental approach. Ph.D. dissertation. Manhattan, KS: Kansas State University. 124 p.
4
Christiaan, M.; Beindorff, S. and Jan Zuidam, N., 2010. Encapsulation technologies for active food ingredients. Springer. 400 p.
5
Draganovic, V.; van der Goot, A.J.; Boom, R. and Jonkers, J., 2014. Assessment of the effects of fish meal, wheat gluten, soy protein concentrates and feed moisture on extruder system parameters and the technical quality of fish feed. Ani. Feed Sci. and Tech. Vol.165, pp:238-250.
6
Du, L. and Niu, C.J., 2003. Effects of dietary substitution of soya bean meal for fish meal on consumption, growth, and metabolism of juvenile giant freshwater prawn, Macrobrachium rosenbergii. Aquacul. Nut. Vol. 9, pp:139-143.
7
FAO. 2015. Aquaculture development 5. Use of wild fish as feed in aquaculture. FAO Technical Guidelines for Responsible Fisheries. No. 5, Suppl. 5. FAO, Rome. 79 p.
8
Gleeson, V.; Sullivan, M. and Evans, A., 1999. Optimisation of the physical quality of aquaculture feeds processed by twin screw extrusion. An empirical modelling approach using response surface methodology. II. Partial replacement of fishmeal by grain legume protein concentrates in feeds for Atlantic salmon (Salmo salar). In: Fishmeal Replacement in Aquaculture Diets, Feed Processing (Evans, A), 80Final Report of Project 93/120-06 to the Fisheries research & development corporation, Canberra, Australia. 46 p.
9
Glencross, B.; Rutherford, N. and Hawkins, W., 2011. A comparison of the growth performance of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) when fed soybean, narrow-leaf or yellow lupin meals in extruded diets. Aquacult. Nutr. Vol. 17, pp: 317-325.
10
Goda, A.M.A.S., 2008. Effect of dietary protein and lipid levels and protein-energy ratio on growth indices, feed utilization and body composition of freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii (de Man 1879) post larvae. Aquacul. Res. Vol. 39. pp: 891- 901.
11
Hossain, M.A. and Islam, M.S., 2006. Optimization of stocking density of freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii (de man) in carp polyculture in Bangladesh. Aquacul. Res. Vol. 37, pp: 994-1000.
12
Jafari, S.M.; Assadpoor, E.; He, Y. and Bhandari, B., 2008. Encapsulation Efficiency of Food Flavours and Oils during Spray Drying. Drying Tech. Vol. 26. pp: 816-835.
13
KabirChowdhury,M.A.;El-Haroun,E.R.;Goda, A.M.S.; Wafa, M.A. and Salah El-Din, S.A., 2007. Growth performance of post-larval freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii (deMan1879) at different dietary protein levels and feeding times. Aquaculture Vol. 275, pp: 1120-1130.
14
Mukhopadhyay, P.K.; Rangacharyulu, P.V.; Mitra, G. and Jana, B.B., 2008. Applied nutrition in freshwater Prawn, Macrobrachium rosenbergii culture. Journal Appl. Aquacul. Vol.13, pp: 317-340.
15
Mai, J. and Kinsella, J.E., 1979. Changes in lipid composition of cooked minced carp (Cyprinus carpio) during storage time. Journal of Food Scie. Vol. 44, pp:1619-1624.
16
Nalladurai, K. and Vance, M., 2009. Factors affecting strength and durability of densified biomass products (Review). Biom. and bioen. Vol. 33, pp: 337-359.
17
New, M.B., 1995. Status of freshwater prawn farming: a review. Aquacu. Rese. Vol. 26, pp: 1-54.
18
New, M.B.; Valenti, W.C.; Tidwell, J.H. and Dabrama, L.R., 2010. Freshwater Prawns Biology and Farming. Blackwell Publishing Ltd. 570 p.
19
Poadas, B.C., 2004. Effects of two palletized feed formulations on experimental freshwater prawn, Macrobrachium rosenbergii, pond production, processing and costs. Journal Appl. Aquacul. Vol. 16, pp: 155-165.
20
Rosas-Romero, A.J. and Morton, I.D., 1977. Competitive oxidation of fatty acids: Effects of the carbonyl group and saturated fatty acids. Journal of Food Sci. and Agricul. Vol. 28, pp: 921-926.
21
Samuelsen, T.A.; Mjos, S.A. and Oterhals, A., 2014. Influence of type of raw material on fish meal physicochemical properties, the extrusion process, starch gelatinization and physical quality of fish feed. Aquacul. Nutr. Vol. 20, pp: 410-420.
22
Sorensen, M.; Luyen, G.Q.N.; Storebakken, T. and Overland, M., 2010. Starch source, screw configuration and injection of steam into the barrel affect physical quality of extruded fish feed. Aquacul. Res. Vol. 41, pp: 419-432.
23
Sorensen, M., 2012. A review of the effects of ingredient composition and processing conditions on the physical qualities of extruded high-energy fish feed as measured by prevailing methods. Aquaculture Nutr. Vol. 18, pp:233-248.
24
Staurnes, M.; Andorsdottir, G. and Sundby, A., 1990. Distended, water filled stomach in sea farmed rainbow trout. Aquaculture. Vol. 90, pp:333-343.
25
Thomas, M.; Van Vliet, T. and Van der Poel, A.F.B., 1998. Physical quality of pelleted animal feed 3. Contribution of feedstuff components. Anim. Feed Sci. Technol. Vol. 70, pp: 59-78.
26
Vest, L., 1993. Southeastern survey: factors which influence pellet production & quality. Feed Manag. Vol. 44. pp:60-80.
27
Young, S.L.; Sarda, X. and Rosenberg, M., 1993. Microencapsulating properties of whey proteins. Journal of Dairy Sci. Vol. 76, pp: 2868-2877.
28
ORIGINAL_ARTICLE
رشد و مرگ و میر میگوی آب شیرین (Macrobrachium nipponense) در دریاچه سد بوستان جنوبشرق دریای خزر
میگوی آبشیرین شرقی (Macrobrachium nipponense) یک گونه غیربومی بوده که بهطور وسیع در حوضه خزر جنوبی پراکنش دارد. این تحقیق جهت مطالعه ویژگیهای رشد و مرگ و میر در منطقه سد بوستان در جنوبشرق دریای خزر بر روی مجموع 860 میگو در طی بهمن 1394 الی مهر 1395 صورت گرفت. نسبت جنسی نر به ماده 1/11: 1 برآورد گردید. دامنه طول کل و وزن در این میگو در منطقه مورد مطالعه بهترتیب 74/94-11/70 میلیمتر و 4/51-0/04 گرم بهدست آمد. فراوانی میگو و وزن در ماههای مختلف، متفاوت و اختلاف معنیدار بود (0/05>p). میانگین طول و وزن در میگوهای نر (میانگین طول کل 40/24 میلیمتر و وزن 0/81 گرم،0/05>p) کمتر از مادهها (میانگین طول کل 41/70 میلیمتر و وزن 1/01 گرم، 0/05>p) بود. ارتباط طول و وزن بین نرها و مادهها در سد بوستان معنیدار و هر دو جنس دارای رشد ایزومتریک بهدست آمد. پیراسنجههای رشد در نرها (میلیمتر) 86/63=∞K= 0/79 ,L و در مادهها (میلیمتر) 76=∞K =1,L بهدست آمد. مرگ و میر طبیعی نرها 1/08 و در مادهها 1/17 محاسبه شد. با توجه به نتایج بهدست آمده بهنظر میرسد سد بوستان محیط مناسبی برای زندگی و رشد این میگو فراهم میکند.
http://www.aejournal.ir/article_88378_80acbc56947a8c3d5c65275244a6c019.pdf
2018-12-22
451
460
M. nipponense
رشد
مرگ و میر
سد بوستان
دریای خزر
هادی
رییسی
raeisi_hadi@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
LEAD_AUTHOR
امین
دانایی
amin.danayi@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
رحمان
پاتیمار
r.patimar@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
Abdolmaleki, Sh., 2003. Dispersion, population dynamics and assessment of Caspian Sea Shrimp reserves, Palaemon Species on the Coast of Guilan Province. Ph.D. Thesis. Science and Research Branch. Islamic Azad University of Guilan, Iran. 252 p. (in Persian)
1
Albertoni, E.F.; Palma-Silva, C. and Esteves, A.F., 2002. Distribution and growth in adults of Macrobrachium acanthurus Wiegmann (Decapoda, Palaemonidae) in a tropical coastal lagoon. Brazil, Revta bras. Zool. Vol. 19,
2
No. 2, pp: 61-70.
3
Andem, A.B.; Idung, J.U.; Eni George, E. and Ubong, G.U., 2013. Length-weight relationship and Fulton’s Condition Factor of brackish river prawn (Macrobrachium macrobrachion Herklots, 1851) from Great Kwa River, ObufaEsuk beach, Cross River state. Nigeria. European Journal of Experimental Biology. Vol. 3, No. 3, pp: 722-730.
4
Bandani, Gh. and Shokri, M., 2012. Length-Weight Relationship and Condition Factor of Macrobrachium nipponese (De Haan, 1849) Ajigol wetland, Golestan province (Iran). State Agrarian university of Armenia, Article No. UDC631.06.02.
5
Bandani, Gh.; Khoshbavar rostami, H.; Keymaram, F.; Sadighi, A. and Mirshekar, D., 2013. First report of shrimp (Macrobrachium nipponense) in Alagol, Almaghel and Ajigol wetlands of Golestan province. Iranian Journal of Fisheries Science. Vol. 3, pp: 164-170. (in Persian)
6
Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology. Palemonid prawns of Myanmar Crustacea: Decapoda: Caridea. Hydrobiologia. Vol. 487, pp: 59-83.
7
DE Grave, S. and Ghane, A., 2006. The establishment of the Oriental River Prawn, Macrobrachium nipponense (de Haan, 1849) in Anzali Lagoon, Iran. Aquatic Invasions. Vol. 1, No. 4, pp: 204-208.
8
Díaz-Barbosa, M., 1995. Supervivenciay aclimataciόn de postlarvas de Macrobrachium rosenbergii (De Man 1979) a valores altos de pH ajustadocon borato-HCl. M.Sc. Thesis, University of Puerto Rico (cited from Satapornvanit, K. 2006, feeding behaviour of the prawn Macrobrachium rosenbergii as an indiator of pesticide contamination in tropical freshwater). Thesis submitted to the University of Stirling for the degree of Doctor of Philosophy.
9
Dineshbabu, A.P., 2006. Length-weight relationship and growth of the speckled shrimp Metapenaeus Monoceros (Fabricius) off Saurashtra. Journal of Marine Biology Ass.India. Vol. 48, No. 2, pp: 180-184.
10
Froese, R., 2006. Cube law, condition factor and Length Weight relationships: history, meta-analysis and recommendations. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, pp: 241-253.
11
Gayanilo, F.C. and Pauly, D., 1997. Computed information series fisheries, FAO-ICLARM stock assessment tools. Refrence manual, Rome Italy. 262 p.
12
Gayanilo, F.C.Jr. and Pauly, D., 1997. The FAO-ICLARM Stock Assessment Tools(FiSAT): Reference Manual. FAO Computerized Information Series - Fisheries, (8). ICLARM, Manila and FAO, Rome. 262 p.
13
Gorgin, S. and Alimohammadi, A., 2004. First report on the presence of Macrobrachium nipponense shrimp in Iran and its morphological comparisons with Macrobrachium rosenbergii. Journal of Research and Development. Vol. 65, pp: 57-59. (in Persian)
14
Haddon, M., 2011. Modelling and Quantitative Methods in Fisheries. Second Edition, Taylor and Francis press. 449 p.
15
Hummel, C.G., 1986. Effects of high pH on the mortality of Macrobrachium rosenbergii (De Man) postlarvae in green and clear water. M.Sc. Thesis, University of Puerto Rico (cited from Satapornvanit, K.).
16
Imanpour Namin, J.; Nami, E. and Heidary, S., 2014. Length-Weight Relationship and Fulton’s Condition Factor of Macrobrachium nipponense (Dehaan, 1849) in southern coasts of the Caspian Sea-Iran. International journal of Advanced Biological and Biomedical Research. Vol. 2, No. 5, pp: 1650-1656.
17
Ismeal, D.; New, MB., 2000. Record the annual Spawning of Ctenopoma Kings leyea. Method for fish Biology.
18
pp: 530-535.
19
Khezri, H., 2000. Investigation of Bacterial Invertebrates in Pools of Shrimp Farms in Helgah Bushehr. Fisheries Research Center of the Persian Gulf, Bushehr. 14 p. (in Persian)
20
King, M., 2007. Fisheries biology, Assessment and management. Second edition. Blackwell publishing ltd. ISBN: 978-1-4051-5831-2.
21
Mantelatto, F.L.M. and Barbosa, L.R., 2005. Population structure and relative growth of freshwater prawn Macrobrachium brasiliense (Decapoda, Palaemonidae) from São Paulo State, Brazil. ActaLimnol. Bras. Vol. 17,
22
pp: 245-255.
23
Mashiko, K., 2000. Variations in body size of individuals at sexual maturity among local populations of the freshwater prawn Macrobrachium nipponense (de Haan), with special reference to freshwater colonization. Crustacean Res. Vol. 29, pp: 20-26.
24
Ogawa, Y.; Hashimoto, H.; Kakuda, S. and Gushima, K., 1991. On the growth and life span of the population of oriental river prawn Macrobrachium nipponense (De Haan) in the Ashida River [Hiroshima, Japan].
25
Oh, C.W.; Hartnoll, R.G. and Nash, R.D.M., 1999. Population dynamics of the common shrimp, Crangon crangon(L.), in Port Erin Bay, Isle of Man, Irish Sea. ICES Journal of Marine Science. Vol. 56, pp: 718-733.
26
Olele, N.E.; Tawari- Fufeyin, P. and Okonkwo, J.C., 2012. Reproductive Biology of freshwater prawn Macrobrachium vollenhovenii (Herklot, 1857) caught in Warri River. Banat’s Journal of Biotechnology. Vol. 3, No. 6, pp: 86.
27
Pauly, D., 1983. Some Simple Methods for the Assessment of Tropical Fish Stocks. FAO Fish. Tech. Pap, 234, Rome. 52 p.
28
Pralon, B.G.N. and Negreiros-Fransozo, M.L., 2006. Population biology of Palaemon (Palaeander) northropi Rankin, 1898(Crustacea, Decapoda, Palaemonidae) in a tropical South American estuary. Actalimnol. Bras. Vol. 18, No. 1, pp: 77-87.
29
Santos, J.A.; Sampaio, C.M.S. and Soares Filho, A.A., 2006, Male Population Structure of the Amazon River Prawn (Macrobrachium amazonicum) in a natural environment. Nauplius. Vol. 14, No. 2, pp: 55-63.
30
Satapornvanit, K., 2006. Feedig behaviour ff the prawn Macrobrachium rosenbergii as an indicator of pesticide contamination in tropical freshwater. Thesis submitted to the University of Stirling for the degree of Doctor of Philosophy.
31
Sparre, P. and Venema, S.C., 1998. Introduction to tropical fish stock assessment. part 1. Manual FAO Fish, Tech. Pap. 306. FAO, Rome, Italy. 407 p.
32
Thghighi, M.; Pashaie Rad, Sh.; Allaf Navirian, H. and Thghighi, H., 2012. Biological Investigation of Shrimp (Macrobrachium nipponense De Haan, 1849) in the Black Sea, Guilan Province. Quarterly journal of animal ecology. Vol. 4, pp: 103-112. (in Persian)
33
Valenti, W.e.; Mello, J.T.E. and Looao, V.L., 1987. Crescimento de Macrobrachium acanthurus (Wiegmann, 1836) do Rio Ribeira do Iguape (Crustacea, Oecapoda, Palaemonidae). Rev. Brasil.Bio I. Vol. 47, No. 3, pp: 349-355.
34
Wang, W.N.; Wang, A.L.; Liu, Y.; Xiu, J.; Liu, Zh.B. and Sun, R.Y., 2006. Effects of temperature on growth, adenosine phosphates, ATPase and cellular defense response of juvenile shrimp Macrobrachium nipponense. Aquaculture. Vol. 256, pp: 624-630.
35
Yakubu, A.S. and Ansa, E.F., 2007. Length-weight relationships of the pink shrimpPenaeus monodon and giant tiger shrimp P. monodon of Buguma Creek in the Niger Delta Nigeria. The Zoology. Vol. 5, 4753 p.
36
Yu, H.P. and Miyake, S., 1972. Five species of the genus Macrobrachium (Crustacea, Decapoda, Palaemonidae) from Taiwan. Ohmu. Vol. 3, pp: 45-55.
37
Zimmermann, S., 1998. Manejo da fase de crescimento final. In: Valenti, W.C.(ed). Carcinicultura deÁgua Doce: Tecnologia para a Produção de Camarões.Fundação de Ampara à Pesquisa do Estado de São Paulo(FAPESP), SãoPaulo and Instituto Brasileiro do Meio Ambiente e dos Recursos Naturais Ronováveis (IBAMA), Brasilia. pp: 191-215.
38
Zovghi Shelmani, A., 2016. Dispersal, population dynamics and reproductive biology of Macrobrachium nipponense shrimp in Anzali lagoon of Iran. Ph.D. Thesis. Agriculture and Natural Resources group. Gonbad Kavous University, Iran. 109 p. (in Persian)
39
ORIGINAL_ARTICLE
عادات غذایی میگو خنجری Edwards, 1837) Parapenaeopsis stylifera) در آبهای ساحلی استان هرمزگان
این مطالعه با هدف بررسی رفتار تغذیهای میگو خنجریParapenaeopsis stylifera در آبهای ساحلی هرمزگان (مناطق بین بندرعباس، هرمز و قشم) انجام شد. نمونهبرداری به مدت 12 ماه از تیر ماه 1395 تا خرداد ماه 1396 و با تور ترال کف ویژه میگو انجام شد. محتویات 363 میگو با دامنه طول کاراپاس 12 تا 33 میلی متر مورد بررسی قرار گرفت. موادغذایی شناسایی شده در روده میگو شامل سختپوست (84%)، الیافگیاهی (7%)، دیاتومه (6%)، فورمینیفورا (روزنه داران)(1%)،کرمنماتد (0/57%) و مژهداران (0/28%) و شکم پا (0/28%) بود. میزان شاخصcvدر هر دوجنس متفاوت و به طور معنی داری در جنس نر بیش تر از ماده بود، درحالی که این شاخص در کلاس های طولی مختلف اختلاف معنی داری نداشت.هم چنین نتایج این تحقیق نشان داد که در بین غذاهای ترجیحی میگو خنجری بیش ترین فراوانی حضور مربوط به گروه غذایی سختپوستان بود درحالی که میزان شاخصFp در کلاسهای طولی مختلف اختلاف معنی داری نداشتند. نتایج نشان داد سختپوستان بیش ترین فراوانی حضور را در محتویات روده میگوها درهمه مراحل رسیدگی تخمدان را به خود اختصاص داده بودند.
http://www.aejournal.ir/article_88386_518303d92c45d56f5f22106beb4e072f.pdf
2018-12-22
461
466
میگو خنجری
ترکیب غذایی
شاخصهای تغذیهای
خلیج فارس
میترا
غفوریان
m.ghaforian.325@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران، صندوق پستی: 3995
AUTHOR
محسن
صفائی
msn_safaie@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران، صندوق پستی: 3995
LEAD_AUTHOR
فرشته
سراجی
saraji2004200@yahoo.com
3
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، بندرعباس، صندوق پستی: 1597- 79145
AUTHOR
زرشناس، غ.؛ عمادی، ح. و سراجی، ف.، 1381. بررسی زیستی میگوی سفید هندی در صیدگاه های منطقه جاسک. مجله علمی شیلات ایران. شماره 2، صفحات 43 تا 52.
1
صفائی، م. و کامرانی، ا.، 1388. معرفی میگوهای خانواده پنائیده در آب های ساحلی استان هرمزگان. فصلنامه پژوهشهای دریایی. دوره1، شماره 1، صفحات 18 تا 22.
2
فرهادیان، ا.؛ بختیاری، ن.؛ محبوبی صوفیانی، ن. و محمدی، م.،1393. بررسی محتویات روده میگو پا سفید (vannamei Litopenaeus) در طی یک دوره پرورش در استخرهای خاکی دلوار بوشهر. مجله علوم فنون دریایی. شماره 4، دوره 1، صفحات 71 تا 80.
3
Baskar, S.; Narasimhan, N.; Swamidass Daniel, G.; Ravichelvan, R.; Sukumaran, M. and Anandaraj, T., 2012. Food and Feeding Habits of Penaeus monodon (Fabricius) from Mallipattinam Coast in ThanjavurDist. Tamil Nadu. India. International Journal of Research in biological Sciences. Vol. 3, No. 1, pp: 1-4.
4
Biswas, S.P., 1993. Manual of Methods in fish Biology. Fish Biology and Ecology laboratory dibrugarh. Dibrugarh. 157 p.
5
Dall, W., 1988. Observation on the biology of the greentail prawn. Metapenaeus mastersii (Haswell) Crustacea: Decapoda: Penaeidae: Aust. Jmar freshwater Res. Australia. pp: 111- 134.
6
Euzen, E., 1987. Food habits and diet composition of some fish of Kuwait, Bulletin Science. Vol. 9, pp: 65-85.
7
Fischer, W. and Bianchi, G., 1984. FAO species identification sheets forpurposesshrimps/prawns. F.A.O document. Vol. 5.
8
Hoppenrath, M.; Elbrachter, M. and Gerhard, D., 2009. Marine phytoplankton. senchenbery and Alferd Wegener institute Germany (AWI). 264 p.
9
Kulkakni,B.G.;Deshmukh,V.D.andKulkarni,V.R., 1999. Food and feeding habit of a penaeide prawn Metapeneopsis stridulans (Alcock 1905), Bombaynatural history society. Vol. 96, No. 2.
10
Menon, M.K., 1952. Notes on the bionomios and fishery of the prawn parapenaeopsis stylifera (M. Edw) on the Malabar Coast. Journal Zoology soc India. Vol. 1, No. 5, pp: 153-162.
11
Rao, P., 1970. Synopsis of biological data the penaeid prawn Parapenaeopsis stylifera (H. Milne Edwards, 1837) fao fisherie reports. Vol. 57, No. 4, pp: 1575-1605.
12
Safaie, M., 2017. Population dynamics of kiddy shrimp, Parapenaeopsis stylifera (H. Milne Edwards, 1837) in the north-west of Qeshm Island. Iran. Tropical Zoology. DOI: 10.1080/03946975.2017.1278662.
13
Tomas, C.R.; Hasle, G.R.; Syvertsen, E.E.; Steidinger, K.A.; Tagen, K.; Thrond sen, J. and Heimadal,B.R., 1997. Identifying Marine phyto plankton, Academic press. 858 p.
14
Varadharajan, D. and Pushparajan, N., 2013. Food and Feeding Habits of Aquaculture Candidate a Potential Crustacean of Pacific, White shrimp Litopenaeus vanamai. south East coast of India. JAquac Res Development. pp: 2155-9546.
15
Yamanī, F. and Prusova, I., 2003. Common copepods of the Northwestern Arabian Gulf: identification guide. Kuwait Institute for Scientific Research. 162 p.
16
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی تغییرات بیان ژن کاتاپسین L و فاکتورهای رشد در میگوی سفید غربی (Litopenaeus vannamei) تحت تاثیر بایوفلاک های متفاوت
کاتاپسین ها جزء اصلی سیستم پروتئولیتیک لیزوزومی و مسئول تجزیه پروتئین های داخل سلولی هستند. هدف این تحقیق ارزیابی تغییرات میزان بیان ژن کاتاپسین ال (CTSL) و فاکتورهای رشد در میگوی سفید غربی (Litopenaeus vannamei) تحت تاثیر بایوفلاک های متفاوت با استفاده از سطوح مختلف پروتئینی بود. چهار تیمار بایوفلاک مشتمل بر بایوفلاک خرما +جیره با پروتئین 25% (P25)، بایوفلاک ملاس+جیره با پروتئین 25% (M25)، بایوفلاک خرما+جیره با پروتئین 15% (P15) و بایوفلاک ملاس+جیره با پروتئین 15% (M15) و یک تیمار شاهد بدون بایوفلاک (38% پروتئین) با 3 تکرار بود. در یک دوره 35 روزه 35 قطعه میگوی جوان (0/33±5/37 گرم) به طور تصادفی در 15 مخزن 300 لیتری (تراکم 175 قطعه در متر مکعب) ذخیره سازی گردید. به منظور برآورد تاثیر بایوفلاک بر میزان بیان ژن کاتاپسین (L (CTSL در هپاتوپانکراس میگو از تکنیک Real time PCR و از ژن Beta actin به عنوان ژن کنترل داخلی استفاده شد. در تمام تیمارهای بایوفلاک نسبت به شاهد افزایش معنی داری در میزان بیان ژن CTSL مشاهده گردید (0/05>P)، هرچندکه تیمار 25P بالاترین میزان بیان را نشان داد (0/05>P). هم چنین بالاترین میزان پارامترهای رشد (وزن به دست آمده، ضریب تبدیل غذایی مطلوب، نرخ رشد و بازماندگی) در میگوهای تیمار P25 و کمترین آن ها در تیمار شاهد دیده شد (0/05>P). نتایج نشان داد میزان بیان ژن CTSL با تغییر منابع کربنی یا میزان پروتئین جیره در بین تیمارهای بایوفلاک، اختلاف معنی داری با یکدیگر نداشتند (0/05<P). به نظر می رسد فناوری بایوفلاک با اثرات مثبت خود بر گوارش و ایمنی، سبب افزایش بیان ژن CTSL در این گونه شده است.
http://www.aejournal.ir/article_88413_b26aa906e24735a59596b0022a0eaf8c.pdf
2018-12-22
467
476
میگوی وانامی
ژنتیک
بایوفلاک
شیره خرما
ملاس
رشد
اکبر
عباس زاده
abas1351@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
وحید
یاوری
yavarivahid@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
AUTHOR
سیدجواد
حسینی
sjh1348@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ایران
AUTHOR
محمود
نفیسی بهابادی
nafisi2002@gmail.com
4
پژوهشکده خلیج فارس، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ایران
AUTHOR
عباس زاده، ا.؛ یاوری، و.؛ حسینی، ج. و نفیسی، م.، 1396. تاثیر منابع مختلف کربنی (ملاس و شیره ضایعات خرما) بر کیفیت آب، عملکرد رشد و ترکیبات بدن میگوی سفید غربی (Litopenaeus vannamei) در سیستم بایوفلاک. مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 6، شماره 4، صفحات 21 تا 38.
1
عظیمی، ع.؛ جعفریان، ح.؛ هرسیج، م.؛ قلی پور، ح. و پاتیمار، ر. 1395. تاثیر نسبت های مختلف کربن به نیتروژن بر پارامترهای آب و عملکرد رشد بچه ماهیان کپور معمولی در سیستم بیوفلاک. نشریه توسعه آبزی پروری. دوره 4، شماره 4، صفحات 75 تا 89.
2
Al Farsi, M.A. and Lee, C.Y., 2008. Nutritional and functional properties of dates: a review. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. Vol. 48, pp: 877-887.
3
Allaith, A., 2008. Antioxidant activity of Bahraini date palm (Phoenix dactylifera L.) fruit of various cultivars. International Journal of Food Science and Technology. Vol. 43, pp: 1033-1040.
4
Anand, P.S.S.; Kohli, M.P.S.; Kumar, S.; Sundaray, J.K.; Roy, S.D.; Venkateshwarlu, G.; Sinha, A. and Pailan, G.H., 2014. Effect of dietary supplementation of biofloc on growth performance and digestive enzyme activities in Penaeus monodon. Aquaculture. Vol. 418-419, pp: 108-115.
5
Aoki, H.; Ahsan, M.N. and Watabe, S., 2003. Molecular cloning and characterization of cathepsin B from the hepatopancreas of northern shrimp Pandalus borealis. Comparative Biochemistry and Physiology Part B. Vol. 134, pp: 681-694.
6
Avnimelech, Y., 1999. Carbon/nitrogen ratio as a control element in aquaculture systems. Aquaculture. Vol. 176, pp: 227-235.
7
Ballester, E.L.C.; Abreu, P.C.; Cavalli, R.O.; Emerenciano, M.; Abreu, L. andWasielesky, W.Jr., 2010. Effect of practical diets with different protein levels on the performance of Farfantepenaeus paulensis juveniles nursed in a zero exchange suspended microbial flocs intensive system. Aquaculture Nutrition. Vol. 16, pp: 163-172.
8
Biglari, F.; AlKarkhi, A.F.M. and Azhar, M.E., 2008. Antioxidant activity and phenolic content of various date palm (Phoenix dactylifera) fruits from Iran. Food Chemistry. Vol. 107, No. 4, pp: 1636-1641.
9
Boudries, H.; Kefalas, P. and Me´ndez, O., 2007. Carotenoid composition of Algerian date varieties (Phoenix dactylifera) at different edible maturation stages. Food Chemistry. Vol. 101, pp: 1372-1377.
10
Cesar, J.R.O. and Yang, J. 2007. Expression Patterns of Ubiquitin, Heat Shock Protein 70, a-Actin and b-Actin Over the Molt Cycle in the Abdominal Muscle of Marine Shrimp Litopenaeus vannamei. Molecular reproduction and development. Vol. 74, pp: 554-559.
11
Correiaa, E.; Wilkenfeld, J.; Morris, T.; Weic, L.; Prangnell, D. and Samocha, T., 2014. Intensive nursery production of the Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei using two commercial feeds with high and low protein content in a biofloc-dominated system. Aquacultural Engineering. Vol. 59, pp: 48-54.
12
Crab, R.; Defoirdt, T.; Bossier, P. and Verstraete, W., 2012. Biofloc technology in aquaculture: beneficial effects and future challenges. Aquaculture. Vol. 356-357, pp: 351-356.
13
Doughty, M.J. and Gruenstein, E.I., 1987. Cell growth and substrate effects on characteristics of a lysosomal enzyme (cathepsin C) in Duchenne muscular dystrophy fibroblasts. Biochemistry and Cell Biology. Vol. 65, No. 7, pp: 617-625.
14
Ekasari, J.; Angela, D.; HadiWaluyo, S.; Bachtiar, T.; Surawidjaja, E.H.; Bossier, P. and De Schryver, P., 2014. The size of biofloc determines the nutritional composition and the nitrogen recovery by aquaculture animals. Aquaculture. Vol. 426, PP: 105-111.
15
FAO. 2016. The state of the world fisheries and aquaculture. FAO Fisheries Department, Food and Agriculture Organization of the United Nations, publishing Management Service, Rome, Italy. http://www.fao.org.
16
Gao, L.; Shan, H.W.; Zhang, T.W.; Bao, W.Z. and Ma, S.J., 2012. Effects of carbohydrate addition on Litopenaeus vannamei intensive culture in a zero-water exchange system. Aquaculture. Vol. 342, pp: 89-96.
17
Glenn, K.; Grapes, L.; Suwanasopee, T.; Harris, D.; Li, Y.; Wilson, K. and Rothschild, M., 2005. SNP analysis of AMY2 and CTSL genes in Litopenaeus vannamei and Penaeus monodon shrimp. International Society for Animal Genetics. Vol. 36, pp: 235-236.
18
Grath, M., 1999. The lysosomal cysteine proteinases. Annual Review of Biophysics and Biomolecular Structure. Vol. 28, pp: 181-204.
19
Hu, K. and Leung, P., 2007. Food digestion by cathepsin L and digestion-related rapid cell differentiation in shrimp hepatopancreas. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 146, pp: 69-80.
20
Hu, K.J. and Leung, P.C., 2006. Complete, precise, and innocuous loss of multiple introns in the currently intronless, active cathepsin L-like genes, and inference from this event. Molecular Phylogenetics and Evolution. Vol. 38, pp: 685-696.
21
Jatoba, A.; Corrêa da Silva, B.; Souza da Silva, J.; Nascimento Vieira, F.; Pedreira Mouriño, J.; Quadros Seiffert, W. and Massucci Toledo, T., 2014. Protein levels for Litopenaeus vannamei in semi-intensive and biofloc systems. Aquaculture. Vol. 432, pp: 365-371.
22
Jung, H.; Lyons, R.; Hurwood, D. and Mather, P., 2013. Genes and growth performance in crustacean species:a review of relevant genomic studies in crustaceans and other taxa. Reviews in Aquaculture. Vol. 5, pp: 77-110.
23
Khanjani, M.H.; Sajjadi, M.M.; Alizadeh, M. and Sourinejad, I., 2017. Nursery performance of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei Boone, 1931) cultivated in a biofloc system: the effect of adding different carbon sources. Aquaculture Research. Vol. 47, pp: 1491-1501.
24
Krummenauer, D.; Samocha, T.; Poersch, L.; Lara, G. and Wasielesky, W.Jr., 2014. The reuse of water on the culture of Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei, in BFT system. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 45, No. 1, pp: 3-14.
25
Le Boulay, C.; Wormhoudt, A. and Sellos, D., 1996. Cloning and expression of cathepsin L-like proteinases in the hepatopancreas of the shrimp Penaeus vannamei during the intermolt cycle. Journal of comparative physiol part B. Vol. 166, pp: 310-318.
26
Liu, L.; Hu, Z.; Dai, X. and Avnimelech, Y., 2014. Effects of addition of maize starch on the yield, water quality and formation of bioflocs in an integrated shrimp culture system. Aquaculture. Vol. 418-419, pp: 79-86.
27
Najdegerami, E.; Bakhshi, F. and Bagherzadeh Lakani, F., 2015. Effects of biofloc on growth performance, digestive enzyme activities and liver histology of common carp (Cyprinus carpio L.) fingerlings in zero -water exchange system. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 42, No. 2, pp: 457-465.
28
Polia, M.; Schveitzer, R. and Pires de Oliveira, A., 2015. The use of biofloc technology in a South American catfish (Rhamdia quelen) hatchery: Effect of suspended solids in the performance oflarvae. Aquacultural Engineering. Vol. 66, pp: 17-21.
29
Qian, Z.; He, S.; Liu, T.; Liu, L.; Hou, F.; Liu, Q.; Wang, X.; Mi, X.; Wang, p. and Liu, X., 2014. Identification of ecdysteroid signaling late-response genes from different tissues of the Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei. Comparative Biochemistry and Physiology Part A. Vol. 172, pp: 10-30.
30
Rania, M.A.; Aisha, S.M.; Mohamed, M.E. and Isam, A.M., 2014. Chemical composition, antioxidant capacity, and mineral extractability of Sudanese date palm (Phoenix dactylifera L.) fruits. Food Science & Nutrition. Vol. 5, pp: 478-489.
31
Rasmussen, R., 2001. Quantification on the Light Cycler. In: Meuer, S., Witter, C., Nakagawa, K. (Eds.), Rapid Cycler Real-time PCR, Methods and Applications. Spinger Press, Heidelberg, pp: 21-34.
32
Ray, A.J. and Lotz, J.M., 2014. Comparing a chemoautotrophic-based biofloc system and three heterotrophic based systems receiving different carbohydrate sources. Aquacultural Engineering. Vol. 63, pp: 54-61.
33
Robalino, J.; Almeida, J.S.; McKillen, D.; Colglazier, J.; Trent, H.F.; Chen, Y.A.; Peck, M.E.T.; Browdy, C.L.; Chapman, R.W.; Warr, G.W. and Gross, P.S., 2007. Insights into the immune transcriptome of the shrimp Litopenaeus vannamei: tissue-specific expression profiles and transcriptomic responses to immune challenge. Physiological Genomics. Vol. 29, pp: 44-56.
34
Samocha, T.M.; Patnaik, S.; Speed, M.; Ali, A.M.; Burger, J.M.; Almeida, R.V.; Ayub, Z.; Harisanto, M.; Horowitz, A. and Brock, D.L., 2007. Use of molasses as carbon source in limited discharge nursery and grow out systems for Litopenaeus vannamei. Aquacultural Engineering. Vol. 36, pp: 184-191.
35
Schveitzer, R.; Arantes, R.; Costódio, P.F.S.; Santo, C.M.D.E.; Arana, L.V.; Seiffert, W.Q. and Andreatta, E.R., 2013. Effect of different biofloc levels on microbial activity, water quality and performance of Litopenaeus vannamei in a tank system operated with no water exchange. Aquacultural Engineering. Vol. 56, pp: 59-70.
36
Standard methods for the examination of water and waste water. 2005. American Public Health Association, American Water Works Association, Water Environment Federation.
37
Turk, B.; Turk, D. and Turk, V., 2000. Lysosomal cysteine protease: more than scavengers. Biochimica et Biophysica Acta. Vol. 1477, pp: 98-111.
38
Xu, W.J. and Pan, L.Q., 2012. Effects of bioflocs on growth performance, digestive enzyme activity and body composition of juvenile Litopenaeus vannamei in zero-water exchange tanks manipulating C/N ratio in feed. Aquaculture. Vol. 356, pp: 147-152.
39
Xu, W.J. and Pan, L.Q., 2013. Enhancement of immune response and antioxidant status of Litopenaeus vannamei juvenile in biofloc-based culture tanks manipulating high C/N ratio of feed input. Aquaculture. Vol. 412-413, pp: 117-124.
40
Zhang, J.; Liu, Y.J.; Tian, L.X.; Yang, H.J.; Ling, G.Y.; Yue, Y.R. and Xu, D.H., 2013. Effects of dietry astaxanthin on growth, antioxidant capacity and gene expression in Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei. Nutrition laboratory, Institute of Aquatic Economical Animals, School of Life Science, Sun Yat-sen University, Guangzhou, China.
41
Zhao, Q.; Pan, L.; Ren, Q. and Hu, D., 2015. Digital gene expression analysis in hemocytes of the white shrimp Litopenaeus vannamei in response to low salinity stress. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 42, pp: 400-407.
42
Zokaeifar, H.; Luis Balcázar, J.; Roos Saad, C.; Salleh Kamarudin, M.; Sijam, K.; Arshad, A. and Nejat, N., 2012. Effects of Bacillus subtilis on the growth performance, digestive enzymes, immune gene expression and disease resistance of white shrimp, Litopenaeus vannamei. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 33, pp: 683-689.
43
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تنوع زیستی و اثر برخی عوامل محیطی بر پراکنش کفزیان رودخانههای جاجرود و کرج
در مطالعات حاضر شناسایی و وضعیت تنوع زیستی کفزیان رودخانه های حفاظت شده جاجرود و کرج، که تامین کننده بخش زیادی از آب شرب شهر تهران می باشند، در طول سه سال متوالی به طور هم زمان بررسی گردیده است. نمونههای فیزیکوشیمیایی و کفزیان با سه تکرار از 19 ایستگاه با سوربر جمع آوری شدند. آنالیزهای آماری توسط نرم افزارهای SPSS ،R و Past صورت گرفت. در رودخانه جاجرود تعداد 6667 ماکروبنتوز در 22 خانواده و در رودخانه کرج تعداد 13246 ماکروبنتوز در 24 خانواده شناسایی شد. بیش ترین فراوانی و تنوع ماکروبنتوز در فصل تابستان و مناسب ترین زمان برای نمونه برداری از کفزیان در محدوده مطالعاتی می باشد. نتایج آزمون آماری CCA نشان داد، پارامترهای کل جامدات معلق، هدایت اکتریکی، اکسیژن محلول و pH بیش ترین سهم را در توزیع کفزیان داشتند. در رودخانه جاجرود باتیده و در رودخانه کرج سیمولیده بیش ترین میزان فراوانی را به خود اختصاص دادند. شاخص غالبیت سیمپسون در تمامی ایستگاه های مطالعاتی بیش تر به سمت یک میل می کند که بیانگر فراوانی بالای یک یا چند خانواده نسبت به سایرین است. مقادیر متوسط شاخص تنوع شانون در طول چهار دوره نمونه برداری در رودخانه کرج بین 0/11±2/04 تا 0/06±2/5 متغیر و در رودخانه جاجرود بین 0/22±1/4 تا 0/42±2/4 نوسان داشت. هر دو رودخانه به لحاظ تنوع زیستی و فون کفزیان به یکدیگر شباهت دارد. براساس نتایج شاخص های تنوع زیستی فعالیت های انسانی بر جوامع کفزیان تاثیرگذار بوده و بیش ترین تاثیر منفی بر اکوسیستم دو رودخانه ناشی از توسعه تفرجگاه ها و تغییرات کاربری اراضی می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_87155_81771478e2989d3eb51be7ce2093b6b9.pdf
2018-12-22
477
488
جاجرود و کرج
شاخص تنوع زیستی
کفزیان
عوامل محیطی
پریسا
تابان
taban_parisa@yahoo.com
1
گروه علوم محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
اصغر
عبدلی
asabdoli@gmail.com
2
گروه تنوع زیستی و مدیریت اکوسیستم، پژوهشکده علوم محیطی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
نعمت الله
خراسانی
khorasani@ut.ac.ir
3
گروه علوم محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
جابر
اعظمی
j.aazami@yahoo.com
4
گروه علوم محیط زیست، دانشکده علوم،دانشگاه زنجان، زنجان، ایران
AUTHOR
باقری توانی، م.؛ فغانی، ح.و نوروزی، م.، 1393. اثر تغییرات شوری و pH بر پراکنش ماکروبنتوزها طی فصول مختلف در مصب رودخانه شیرود. علوم و مهندسی محیط زیست. شماره 4، صفحات 63 تا 70.
1
باقری توانی، م.، 1394. بررسی شاخصهای ماکروبنیتک در رودخانه شیرود. زیست شناسی دریا. صفحات 81 تا 96.
2
پروندی، ش.؛ عبدلی، ا. و هاشمی، س.م.، 1394 .پایش و تعیین کارایی شاخصهای زیستی ماکروبنتوز برای ارزیابی کیفیت آب رودخانه جاجرود. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه شهید بهشتی. 111 صفحه.
3
پروندی، ش.؛ عبدلی، ا. و هاشمی، س.م.، 1395. ارزیابی زیستی رودخانه جاجرود با استفاده از ساختار جمعیت ماکروبنتوزها. مجله بوم شناسی آبزیان. سال 3، صفحات 20 تا 32.
4
حیدری، ن.؛ یزدیان، ح.؛ زهرایی، ب. و جعفرزاده حقیقی فرد، ن.، 1391. ارزیابی زیستی رودخانه کشکان رود براساس تنوع و ساختار جمعیتی ماکروبنتوزها. همایش ملی حفاظت و برنامه ریزی محیط زیست.
5
خاتمی، ح.، 1383. پایش اکولوژیک ماکروبنتوزها. سازمان حفاظت محیط زیست.
6
خاتمی، ح.؛ ریاضی، ب. و مدیری آثاری، ا.، 1385. ارزیابی بیولوژیک رودخانه کرج. مجله علوم و تکنولوژی محیط زیست. سال 2، شماره 1، صفحات 71 تا 78.
7
خسروانی، ش.؛ محمدی زاده، ف. و یحیوی، م.، 1393. ارزیابی زیستی رودخانه حاجی آباد (استان هرمزگان) با استفاده از ساختار جمعیت ماکروبنتوز. مجله بوم شناسی آبزیان. سال 4، شماره 1، صفحات 35 تا 43.
8
شایان،س.؛ بنی صفار، م.؛زارع، غ. و فضلی، ن.،1392. ارزیابی توانمندی توسعه گردشگری پایدار ژئومورفوسایتها با تاکید بر روش کومانسکو (مطالعه موردی: ژئومورفوسایتهای مسیر گردشگری کرج- چالوس تا تونل کندوان). نشریه برنامه ریزی و توسعه گردشگری. شماره 23، صفحات 78 تا 94.
9
شربتی، ص.؛ اکرمی، ر.؛ یلقی، س.؛ میردار، ج. و احمدی، ز.، 1391. شناسایی، تعیین فراوانی و زی توده جوامع ماکروبنتوزها در ساحل جنوب شرقی دریایی خزر. مجله شیلات ایران. دوره 11، شماره 3، صفحات 23 تا 31.
10
شکری پور، ز. و اشجع اردلان، آ.، 1395. شناسایی و بررسی تنوع ماکروبنتوزهای رودخانه کرج. مجله پژوهش های جانوری. جلد 29، شماره 4، صفحات 442 تا 453.
11
شیرچی، ز.؛ عبدلی، ا. و هاشمی، س.م.،1394. ارزیابی زیستی رودخانه جاجرود با استفاده از شاخصهای یگانه و مولتی متریک، مجله منابع طبیعی ایران. سال 5، شماره 4، صفحات 83 تا 93.
12
شیرچی، ز.؛ عبدلی، ا.؛ هاشمی، س.م. و کامبوزیا، ج.، 1391. استفاده از شاخص زیستی بزرگ بی مهرگان کفزی برای ارزیابی کیفیت آب رودخانه جاجرود. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه شهید بهشتی. 96 صفحه.
13
کمالی، م. و اسماعیل ساری، ا.، 1388. ارزیابی زیستی رودخانه لاسم با استفاده از ساختار جمعیت ماکروبنتوز. مجله علوم محیطی. سال 12، شماره 2، صفحات 51 تا 61.
14
طباطبایی، ط.؛ امیری، ف. و پذیرا، ع.، 1388. پایش ساختار و تنوع اجتماعات ماکروبنتیک به عنوان شاخص آلایندگی در خورهای موسی و غنام. مجله علمی و پژوهشی شیلات. سال 3، شماره 4، صفحات 29 تا 41.
15
محمودی، م.؛ عبدلی، ا. و تقوی، ل.،1393.بررسی شاخصهای ماکروبنتیک به منظور بررسی آلودگیهای آب (مطالعه موردی سرشاخههای شهرستانک و ولایترود. رودخانه کرج، پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه علوم و تحقیقات تهران. 115 صفحه.
16
Aazami, J.; Esmaili-Sari, A.; Abdoli,A.; Sohrabi, H. and Van den Brink, P.J., 2015.Monitoring and assessment of water health quality in the Tajan River, Iran using physicochemical, fish and macro invertebrates indices. Journal of Environmental Health Science and Engineering. Vol. 2, pp: 13-29.
17
Arimoro,F.O. and Unique, N.K., 2017. The intensity of Human-induced impacts on the distribution and diversity of macroinvertebrates and water quality of GbakoRiver,North Central, Nigeria. Journal of Energy Ecology Environonment. Vol. 11, pp: 143-154.
18
Aschalew, L.and Moog, O., 2015. Benthic macroinvertebrates based new biotic score,ethbios for assessing ecological conditions of highland streams and rivers in Ethoiopia. Journal of Limnoligica. Vol. 5, pp: 9-11.
19
Beatty,J.; Macdonal,l.; Westcott, F.and perrin,C., 2006.Guidlines for Sampling bentic invertebrates in British Columbia streams. 34 p.
20
Hammer, Ø.; Harper, D.A.T. and Ryan, P.D., 2001. PAST: Paleontological statistics software package for education and data analysis.
21
Hartmann, A., 2007. Field key for selected benthic invertebrates from the HKN region.
22
Krisanti,M.; Wardiatno,Y.and Yam, A., 2017. Assessing the ecological status of the Cisadane River head waters using benticmacroinvertebrate. Journal of Earth and Environmental Science.
23
Langdon, P.G.; Ruiz, Z.; Brodersen, K.P. and Foster,I.,2006. Assessing lake eutrophication using chironomids: understanding the nature of community response in different Lake types. Journal of Freshwater biology. Vol. 13, pp: 62-77.
24
Li, j.; Dong, S.; Peng, M.; Yang, Z.; Liu, S. and Li, X ., 2013. Effects of damming on the biological integrity of fish assemblages in the middle Lancang-Mekong River basin. Journal of Ecological Indicator.
25
Mandavilles,S.M., 2002. Benthic macroinvertebrates in freshwater-taxa tolerance values, metric and protocol. Soil and water conservation Society of Matro Halifax, New York.
26
Marzin, A.; Archaimbault, V.; Belliard, J.; Chauvin, C.; Delmas, F. and Pont, D., 2012. Ecological assessment of running waters: do macrophytes, macroinvertebrates, diatoms and fish show similar responses to human pressures? Journal of Ecological indicators. Vol. 23, pp: 56-65.
27
Mattson,B.; Kominoski, J.; Rashleigh, B. and Eggert, S., 2007. Using Long-Term chemical and Biological indicators to Assess Stream Health in the upper Oconee River Watershed. Proceedings of the Georgia Water Resources Conference, held at university of Georgia.
28
Mwedzi, T.; Bere, T.S.N.; Mangadze, T. and Bangria, C., 2016. Longitudinal macroinvertebrate assemblages in contrasting discontinuities: the effects of damming in tropical streams. Journal of African Ecology. Vol. 23, pp: 94-183.
29
Obot,O.; Ekpo, I.E. and Esau, E.F., 2014. Physico Chemical Parameters and Macro-Benthos of Ediene Stream, Akwa Ibom State, Nigeria. Journal of American Biology and Life Science. Vl. 12, pp:112-121.
30
Ortiz, J.D. and Puig, M.A., 2007. Point source effects on density, biomass and diversity of bentic macroinvertebrate in a Mediterranean Stream. Journal of River Research and Applications. Vol. 17, pp: 70-155.
31
Oscoz, J.; Galicia, D. and Miranda, R., 2011. Identification guide of freshwater macroinvertebrates of Spain. Journal of Springer Science and Business Media. Vol. 9, pp: 14-22.
32
Tello, A.; Corner, R.A. and Telfer, T.C., 2010. How do land-based salmonid farms affect stream ecology? Journal of Environmental Pollution. Vol. 9, No. 11, pp: 47-58.
33
Yazdian, H.; Jaafarzaseh, N. and Zagraei, B., 2014. Relationship between bentic macroinvertebrate bio-indices and physicochemical parameters of water: a tool for water resources managers. Journal of Environmental Health Science and Engineering. Vol. 5, pp: 9-11.
34
You, Z.; Liu, l.; Cheng, L.; Cai, Y.; Yin, H.; Gao, j. and Gao, Y., 2014. macroinvertebrate assemblages in streams and rivers of a highly developed region (Lake Taihu basin, China). Journal of Aquatic Biology. Vol. 17, pp: 15-28.
35
Zaabar, W.; Zakhama-Sraieb, R.;Charfi-Cheikhrouha,F. andSghaier Achouri,M., 2015. Abundance and diversity of amphipods on shallow algae and seagrass in lagoon ecosystem of Mediterranean Tunisian coast. Journal of Zoological studies. Vol. 6, pp: 1-11.
36
ORIGINAL_ARTICLE
روند جایگزینی کفزیان در حوضه جنوب شرقی دریای خزر و ارتباط آن با شرایط تروفی اکوسیستم
مطالعه مستمر اکولوژیک دریای خزر، به خصوص پراکنش، شناسایی گونه ها و نوسانات منطقه ای قبل از هر مطالعه، ضروری به نظر می رسد، بر این اساس در پژوهش حاضر روند جایگزینی گروه های کفزی در خلیج گرگان و حوضه جنوب شرقی دریای خزر (منطقه استان گلستان)، مورد مطالعه قرار گرفت و با نتایج به دست آمده در پژوهش های مشابه پیشین مقایسه شد. نتایج حاصل از بررسی کفزیان نشان داد که به ترتیب کرم های پرتار، کرم های کمتار، نماتدها، کرم های شیرونومیده، صدف های دوکفه ای و سخت پوستان آمفی پودا اصلی ترین فون کفزی اکوسیستم را تشکیل داده اند. این نتایج نشان دهنده وجود وضعیت بسیار نامناسب کیفی در مناطق مورد بررسی می باشد. نتایج حاصل از مقایسه با سایر پژوهش های پیشین نیز نشان داد که عواملی نظیر ورود آلاینده های آلی و معدنی، دفع نامناسب زباله ها، بسته شدن کانال های اصلی دریای خزر و عدم تهویه اکوسیستم، ساخت تاسیسات نامناسب صیادی و غیره موجب ایجاد شرایط هایپرتروفی و کاهش بسیار زیاد تراکم و تنوع کفزیان در این مناطق گردیده است.
http://www.aejournal.ir/article_88422_60305b5e9452acf63b93b36550115ab4.pdf
2018-12-22
489
498
دریای خزر
خلیج گرگان
وضعیت تروفی
جایگزینی کفزیان
نیلوفر
نوروزی
norouziniloufar67@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
رسول
قربانی
rasulghorbani@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سید عباس
حسینی
hosseini.abbas@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سید علی اکبر
هدایتی
hedayati@gau.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
رحمت
ندافی
rahmat.naddafi@slu.se
5
گروه شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، سوئد
AUTHOR
افرائی بندپی، م.ع.؛ هاشمیان کفشگری، ع. و پرافکنده، ف.، 1395. بررسی ساختار جمعیت بزرگ بی مهرگان کفزی در سواحل جنوبی دریای خزر به منظور استقرار قفس های پرورش ماهی. مجله علمی شیلات ایران. دوره 25، شماره 5، صفحات 23 تا 39.
1
رضوی صیاد، ب.، 1371. منابع زیستی دریای خزر. مرکز تحقیقات شیلات گیلان. 44 صفحه.
2
سلیمان رودی،ع.،1373. فون بنتیک حوضه جنوبی دریای مازندران، اعماق 40 تا 80 متری. مجله علمی شیلات ایران. دوره 10، شماره 3، صفحات 41 تا 56.
3
نیکوییان، ع.، 1381. بررسی فراوانی و پراکنش و تنوع و تولید ثانویه بی مهرگان کفزی (ماکروبنتوزها) در خلیج چابهار. رساله دکتری بیولوژی دریا دانشگاه آزاد. واحد علوم تحقیقات تهران.
4
هاشمیان کفشگیری، ع.، 1377. پراکنش و تغییرات فصلی زیتوده و تنوع ماکروبنتوزهای غالب سواحل جنوبی دریای خزر. پایان نامه کارشناسی ارشد زیست دریا. دانشگاه تربیت مدرس. 110 صفحه.
5
Aghajari, S.N. And Ghorbani, R., 1391. Ecological assessment of natural water resources of the Caspian Sea basin based on ASPT and BMWP indices. Second National Conference on Caspian Sea Fisheries Resources.
6
Davis, J.; Minshall, G.; Wayne, R.; Christopher, T. and Landres, P., 2001. Monitoring Wilderness Stream ecosystems. Department of Agriculture, Forest Service, Rocky Mountain Research Station. 137 p.
7
Hoffman, J.C.; Peterson, G.S.; Cotter, A.M. and Kelly, J.R., 2010. Using stable isotope mixing in a great lakes coastal tributary to determine food web linkages in young fishes. Journal of Estuaries and Coasts. Vol. 33, pp: 1391-1405.
8
Hosseini, S.A.; Ganjian, A.; Makhloogh, A.; Kayhan Sani, A.; Tahami, F.; Mohammadjani, T.; Heydari, A.; Makarimi, M.; Makhdoomi, N.; Roshan Tabari, M.; Takmilian, K.; Roohi, A.; Rostamian, M.; Fallahi, M.; Sabok ara, J.; Khosravi, M.; Varesdi, S.A.; Hashemian, A.; Vahidi, F.; Nasrollahzadeh, H.; Najafpour, S.; Soleimaniroodi, A.; Lalooyi, F.; Gholamipour, S.; Oloumi, Y. And Salarvand, Gh., 1839. Study of hydrology and hydrobiology of the Caspian Sea basin. National Fisheries Research Center. Final report. 250 p.
9
Katonin, A. And Pourgholam, R., 1373. Hydrology and Hydrobiology of the Southern Caspian Basin. Fisheries Research Center of Mazandaran. 980 p.
10
Lydia, M.J.; Crawford, C.G. and Fery, J.W., 2000. A comparision of selected diversity, similarity and biotic indices for detecting changes in benthic intervebrate community structure and stream quality. Arch. Environ. Contom. Toxical. Vol. 39, pp: 469-479.
11
Mirzajani, A.S., 1997. Determination of live mass and distribution of benthic species in the southern Caspian Sea Astara to Chalous. Journal of Research and Development. Vol. 37, No. 4, pp: 130- 126.
12
Qasim AF, G., 1978. Ecology of the Caspian Sea. Fisheries Research Institute. 272 p. (Translated)
13
Qasim AF, G., 2005. Benthoses of the Black and Azov Sea and their role in the production of benthoses in the Caspian Sea. Guilan Fisheries Research Center. 23 p. (Translated)
14
Ramskov, T. and Forbes, V.E., 2008. Life history and population dynamics of the opportunistic polychaete Capitella sp. In relation to sediment organic matter. Marine Ecology Progress Series. Vol. 369, pp: 181-192.
15
Roohi, A.; Kideys, A.; Sajjadi, A.; Hashemian, A.; Pourgholam, R.; Fazli, H.; Ganjian Khanari, A. and Eker Develi, E., 2010. Changes in biodiversity of phytoplankton, zooplankton, fishes and macrobenthos in the Southern Caspian Sea after the invasion of the ctenophore Mnemiopsis Leidyi. Biological Invasions. Vol. 12, pp: 2343-2361.
16
Rozali Othman, M.; Samat, A. and Hoo, L.S., 2002. The effect of bed sediment quality on distribution of macrobenthos in Labu River system and selected site in Langat River, Malasia. Online Journal of Biological Science. Vol. 2, No. 1, pp: 32-34.
17
Shiganova, T.A.; Dumont, H.J.; Sokolsky, A.F.; Kamakin, A.M.; Tinenkova, D. and Kurasheva, E.K., 2004. Population dynamics of Mnemiopsis leidyi in the Caspian Sea, and effects on the Caspian Ecosystem. In: Dumont H, Shiganova TA, Niermann U (eds). In Aquatic Invasions in the Black, Caspian, and Mediterranean Seas. Vol. 35, pp: 71-111.
18
Soleimani Roody, A.; Hashemian, A.; Salarvand, B.; Raisian, A.; Nasrollahzadeh Sarove, H.; Farabi, S.M.V.; Makloukh, A.; Naderi, M.; Eslami, F.; Eliasi, F.; Nazari, M.; Dashti, A.; Rezaei Nasrabadi, A.; Salmani, A. and Rostami, M., 2016. Investigation on diversity, distribution, abundance and zinc content of macrobenthes in the southern part of the Caspian Sea in 2009. Caspian Sea Ecology Research Institute. 108 p.
19
Spellman, F.R. and Drinan, J.E., 2002. Stream ecology and self purification, Lancaster Technomic Publication Inc. USA. 261 p.
20
Tiffany, L.H. and Britton, M.E., 1971. The Algae of Illinois. Hanfer Publishing Company, Newyork. 407 P.
21
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی اثرات محیط زیستی پساب آبزی پروری بر جوامع کفزی، مطالعه موردی: تالاب گمیشان، استان گلستان
آبزی پروری از جمله فعالیت های انسانی است که توسعه کنترل نشده آن بر محیط زیست اطراف، اثرات منفی دارد و پایش زیستی یکی از راه های بررسی آن است. در این مطالعه، اثرات محیط زیستی پساب مزارع پرورش میگو بر اجتماع کفزیان تالاب گمیشان بررسی شد. جهت نمونه برداری از جوامع کفزی، 6 ایستگاه تعیین و نمونه ها به صورت ماهانه و به مدت یک سال جمع آوری شدند و از پنج شاخص جهت بررسی وضعیت کیفی تالاب گمیشان استفاده گردید. نتایج نشان داد که میانگین کفزیان برابر با 31934 تعداد در مترمربع و بیش ترین فراوانی مربوط به خانواده Pyrgulidae بود. مصب رودخانه گرگانرود بیش ترین فراوانی را در بین ایستگاه های نمونه برداری نشان داد. مقایسه تراکم در ماه های مختلف نیز بیش ترین فراوانی را در سه ماه نخست سال نشان داد و با آغاز فصل تابستان، تراکم کاهش یافت. با شروع خروج پساب مزارع پرورش میگو از شهریور، میانگین فراوانی روند صعودی در پیش گرفت، ولی در چهار ماه پایان سال، از فراوانی آن ها مجدداً کاسته شد. بررسی مقادیر شاخص مارگالف و شانون-وینر در ماه ها و ایستگاه های مختلف نشان دهنده آلودگی در این تالاب بود. با محاسبه شاخص سیمپسون مشخص شد با افزایش آلودگی در تالاب در کنار کاهش حجم آب، توزیع کفزیان رو به یکنواخت تر شدن است. شاخص پیلو با میانگین 0/4، تفاوت معنی داری در بین ایستگاه ها و ماه های مختلف نمونه برداری نشان نداد. بررسی شاخص پراکنش نیز لکه ای بودن پراکنش کفزیان را تایید نمود. در مجموع، کیفیت آب در تالاب گمیشان نامطلوب ارزیابی شد و ضرورت اعمال سیاست های مدیریتی کارآمد به منظور بهبود کیفیت آب در این تالاب بین المللی مشخص گردید.
http://www.aejournal.ir/article_88424_8e742b5d30df406b32a8159f0baab1e1.pdf
2018-12-22
499
510
اثرات محیط زیستی
پساب
آبزی پروری
بزرگ بی مهرگان کفزی
تالاب گمیشان
فخریه
شیرود میرزایی
f.shmirzaie@yahoo.com
1
گروه شیلات،دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
رسول
قربانی
rasulghrobani@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سید عباس
حسینی
seyedabbas_hosseini@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
فرخ
پرافکنده حقیقی
parafkandeh@hotmail.com
4
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران، صندوق پستی: 6116- 14155
AUTHOR
حسن
نصرالله زاده ساروی
hnsaravi@yahoo.com
5
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران، صندوق پستی: 961
AUTHOR
اجتهادی، ح.؛ سپهری، ع. و عکافی، ر.، 1387. روش های اندازه گیری تنوع زیستی. انتشارات دانشگاه فردوسی مشهد. 228 صفحه.
1
اداره کل شیلات استان گلستان. 1382. ارزیابی اثرات زیست محیطی مجتمع پرورش میگوی گمیشان. 29صفحه.
2
اونق، م.، 1370. نظرات مختلف درباره بالا آمدن سطح آب دریای خزر. اطلاعات، تیرماه، شماره 19375-19371.
3
بساط نیا، ن. 1390. اثر پساب استخرهای پرورش آبزیان بر تنوع و فراوانی بزرگ بیمهرگان کفزی تالاب گمیشان. پایاننامه کارشناسی ارشد رشته شیلات. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 77 صفحه.
4
بیرشتین، ی. آ.؛ وینوگرادوف، ل.گ.؛ کونداکوف، ن.ن.؛ کوون، م.س.؛آستاخوف،ت.و.ورومانوف،ن.ن.،1968. اطلس بی مهرگان دریای خزر. مترجم: لودمیلاد دلیناد و فضه نظری. مرکز تحقیقات شیلات ایران. 610 صفحه.
5
خیرآبادی، و.، 1393. تغییرات فصلی جامعه فیتوپلانکتونی و ارتباط آن با فاکتورهای فیزیکو-شیمیایی آب در تالاب بینالمللی گمیشان در استان گلستان. پایاننامه کارشناسی ارشد رشته مهندسی شیلات، دانشگاه زابل. 96 صفحه.
6
رهبری، ک.، 1384. مطالعه تأثیر برخی از پارامترهای زیست محیطی بر روی اجتماعات ماکروبنتیک در رودخانه کارون از بازه ملاثانی تا داروخوین. پایاننامه کارشناسی ارشد رشته محیط زیست. واحد علوم وتحقیقات اهواز. 72 صفحه.
7
ریاضی، ب.، 1380. بررسی ساختار بوم سازگان تالاب گمیشان. پایاننامه دکتری رشته مدیریت محیط زیست. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات. 214 صفحه.
8
ریاضی، ب.، 1381. بررسی بی مهرگان کفزی در تالاب گمیشان. مجله منابع طبیعی ایران. جلد 55، شماره 2، صفحات 211 تا 223.
9
شرکت مهندسین مشاور سبزاندیش پایش (ساپ). 1389. مطالعات ارزیابی اثرات زیست محیطی پرورش میگوی وانامی در مجتمع گمیشان. 238صفحه.
10
شیرودمیرزایی، ف.، 1391. بررسی مرز بخش ساحلی تالاب گمیشان براساس فون کفزی با استفاده از سیستم اطلاعات جغرافیایی (GIS). پایاننامه کارشناسی ارشد رشته شیلات. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 138 صفحه.
11
طیبی، ل.؛ پورباقر، ه.؛ فرحمند، ح.؛ رفیعی، غ. و میرواقفی، ع.، 1395. استفاده از تحلیل تشخیصی برای بررسی اثرات اکولوژیک پساب کارگاه تکثیر و پرورش قزل آلای رنگین کمان بر ساختار جوامع بنتیک (مطالعه موردی: رودخانه گاماسیاب). مجله منابع طبیعی ایران، دوره 69، شماره 2، صفحات 221 تا 234.
12
قانع ساسان سرایی، ا.؛ احمدی، م.ر.؛ اسماعیلی، ع. و میرزاجانی، ع.، 1385. ارزیابی زیستی رودخانه چافرود استان گیلان با استفاده از ساختار جمعیت ماکروبنتوز. مجله علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی. سال 10، شماره 1، صفحات 247 تا 258.
13
وثوقی، غ. و مستجیر، ب. 1371. ماهیان آب شیرین. انتشارات دانشگاه تهران. 317 صفحه.
14
Barbour, M.T.; Grritsen, J.; Synder, B.D. and Stribling, J.B., 1999. Rapid bioassessment protocols for use in streams and wadable Rivers, Environmental protection agency, office of water, Washington D.C.
15
Bellan-Santini, D., 1980. Relationship between populations of amphipods and pollution. Journal of Marine Pollution Bulletin. Vol. 11, pp: 224-227.
16
Boyd, C.E. and Massaut, L. 1999. Risks associated with the use of chemicals in pond aquaculture. Aquacultural Engineering. Vol. 20, pp: 113-132.
17
Burford, M.A.; Constanzo, S.D.; Dennison, W.C.; Jackson, C.J.; Jones, A.B.; Mckinnon, A.D.; Preston, N.P. and Trott, L.A., 2003. A synthesis of dominant ecological processes in intensive shrimp ponds and adjacent coastal environments in NE Australia. Marine Pollution Bulletin. Vol. 46, pp: 1456-1469.
18
Castello, J.P.; Poersch, L.; Vasconsellos, M.C.; Cavalli, R.O. and Wasielesky, W.J., 2008. Rearing shrimps in Pens: a predictive model for impact assessment. Estuaries and Coasts. Vol. 31, pp: 215-222.
19
Chen, Q.H.; Xu, R. L.; Tam, N.F.; Cheung, S.G. and Shin, P.K., 2008. Use of ciliates (Protozoa: Ciliophora) as bioindicator to assess sediment quality of two constructed mangrove sewage treatment belts in Sothern China. Marine Pollution Bulletin. Vol. 57, pp: 689-694.
20
Clark, J.R., 1995. Coastal zone management handbook. Lewis Publishers. 720 p.
21
Davies, A., 2001. The use and limits of various methods of sampling and interpretation of benthic macroinvertebrates. Journal of Limnology. Vol. 60, pp: 1-6.
22
Dierbery, F.E. and Kiattisimkal, W., 1996. Issues, impacts and implications of shrimp aquaculture in Thailand. Environmental Management, Vol. 20, 18 p.
23
Fries, L.T. and Bowels, D.E., 2002. Water quality and macroinvertebrates community structure associated with a sport fish hatchery outfall, North American Journal of Aquaculture. Vol. 64, pp: 257-266.
24
Hardie, S.A., 2003. Current Status of the Macroinvertebrate communities in Lakes Crescent and Sorell. Inland Fisheries Service, Hobart. 39 p.
25
Karr, J.R., 1998. Rivers as sentile: Using the Biology of Rivers to Guide Landscape Management. Final Report for USEPA. 28 p.
26
Kornijow, R., 1992. Seasonal migration by larvae of an epiphytic Hydrobiology. Agriculture University, Akademika Lubin Poland. Vol. 13, pp: 920-950.
27
Loch, D.D.; West, J.L. and Perlmutter, D.G., 1996. The effect of trout farm effluent on the taxa richness of benthic macroinvertebrates. Aquaculture. Vol. 147, pp: 37-55.
28
Margalef, R., 1968. Perspectives in Ecological Theory, Chicago, University of Chicago Press. 111 p.
29
Molvaer, J.; Knutzen, J.; Magnusson, J.; Rygg, B.; Skei, J. and Sørensen, P., 1997. Classification of Environmental Quality in Fjords and Coastal Waters. SFT guidelines. Vol. 97, pp: 30-36.
30
Naderi Jolodar, M.; Abdoli, A.; Mirzakhani, M.K. and Sharifi Jolodar, A., 2011. Benthic macroinvertebrates in the Haraz River to the trout farms effluent. Iranian Journal of Natural Resources. Vol. 64, pp: 163-175.
31
Pielou, E.C., 1969. The measurement of diversity in different types of biological collections. Journal of theoretical biology. Vol. 13, pp: 131-144.
32
Pillay, T.V.R., 2007. Aquaculture and the environment. Former programmed. Fishing News Books, Blackwell Publishing, Ltd. 189 p.
33
Pipan, T., 2000. Biological assessment of stream water quality-the example of the Reka River (Slovenia). SAZU.
34
Ros, J.D. and Cardell, M.J., 1991. La diversidad específica y otros descriptors de contaminación orgánica en comunidades bentónicas marinas, Actas del Symposium sobre Diversidad Biológica. Centro de Estudios Ramón Areces, Madrid. pp: 219-223.
35
Rosenberg, D.M.; Davies, I.J.; Cobb, D.G. and Wiens, A.P., 1999. Protocols for measuring Biodiversity: Benthic macroinvertebrates in Freshwaters. Department of fisheries and Oceans, Freshwater Institute, Winnipeg, Manitoba. 42 p.
36
Samocha, T.M. and Lawrence, A.L., 1995. Shrimp farms, effluent waters, Environmental impact and potential treatment methods. Corpus Christi, Texas. 25 p.
37
Sansanayuth, P. and Phadungchep, A., 1996. Shrimp pond effluent pollution problems and treatment by constructed wetlands. Water Quality International. Elsevier Science Ltd. Thailand. 6 p.
38
Shannon, C.E. and Wiener, W., 1964. The mathematical Theory of Communication. Urbana, USA, University of Illinois Press.
39
Smith, P.T., 1996. Characterisation of effluent from Prawn ponds on the Clarence River. Pacon Conference, Australia. 11 p.
40
Stephens, W.W. and Ferris, J.L., 2004. Instream community assessment of aquaculture effluents. Aquaculture. Vol. 231, pp: 149-162.
41
Thomas, P.C., 1998. Current and emerging trends in aquaculture. Daya Publication House, Delhi, India. pp: 370-384.
42
Welch, E.B., 1992. Ecological effect and waste water. 2nd edition. Chapman & Hall. 425 p.
43
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی ویژگی های ریخت شناسی و تفاوت های بین گروهی در اسکوئید هندی (Uroteuthis duvaucelii) در خلیج فارس و دریای عمان
در این تحقیق، جهت مقایسه و بررسی تفاوت های بین گروهی اسکوئید هندی (Uroteuthis (Photololigo) duvaucelii) گونه غالب از سرپایان در آب های خلیج فارس و دریای عمان از ویژگی های ریخت شناسی با روش آنالیز تشخیص استفاده شد. هم چنین تعیین مهم ترین متغیرهای موثر با روش تحلیل عاملی با تجزیه مولفه های اصلی یا PCA صورت پذیرفت. برای این منظور اسکوئید هندی از دو منطقه در آب های خلیج فارس (آب های بوشهر و غرب تنگه هرمز) و دریای عمان (آب های سیستان و بلوچستان و شرق تنگه هرمز) به وسیله تور ترال کف با چشمه 75 میلی متر صید شدند و 21 ویژگی ریخت شناسی آن ها مورد بررسی قرار گرفت. نتایج حاصل از این پژوهش نشان داد که در آنالیز مولفه های اصلی برای متغیرهای مورد بررسی، دو مولفه تشکیل شد که مولفه اول شامل طول و عرض مانتل، وزن بدن، طول و عرض باله، طول و عرض سر، قطر چشم، طول غضروف گردنی، طول قیف، طول و عرض گلادیوس، وزن گلادیوس، عرض ساقه گلادیوس، محیط مانتل و طول آبشش 54/24 درصد و مولفه دوم شامل طول بازوهای اول تا چهارم 81/5 درصد از کل واریانس را به خود اختصاص داده است. بررسی تفاوت بین گروهی با روش آنالیز تشخیص سه تابع را نشان داد که در 0/05>P معنی دار است که نشان دهنده اختلاف و تمایز بین گروه ها است. بنابراین یک گروه در دریای عمان و دو گروه در خلیج فارس تشخیص داده شد.
http://www.aejournal.ir/article_88432_fe76827c051285c01e800e2cc6b9cd8a.pdf
2018-12-22
511
518
اسکوئید هندی
آنالیز تشخیص
PCA
دریای عمان
خلیج فارس
شادی
خاتمی
shadi.khatami1@gmail.com
1
گروه بیولوژی دریا، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
تورج
ولی نسب
t_valinassab@yahoo.com
2
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران، صندوق پستی: 6116- 14155
AUTHOR
فرهاد
کیمرام
farhadkaymaram@gmail.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران، صندوق پستی: 6116- 14155
AUTHOR
پارسامنش، ا.، 1379. اصول ارزیابی ذخایر آبزیان. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 163 صفحه.
1
خاتمی، ش.؛ ولی نسب، ت.؛ مصطفوی، پ.؛ فاطمی، م. و کی مرام، ف.،1393. بررسی مقایسه ای رشد گلادیوس با شاخص های ریخت سنجی اسکوئید هندی در آب های خلیج فارس و دریای عمان. محیط زیست جانوری. سال 6، شماره 3، صفحات 179 تا 185.
2
رضایی، ا.، 1392. راهنمای گام به گام برای تحلیل داده ها با استفاده از برنامه SPSS. چاپ اول. انتشارات فروزش. 235 صفحه.
3
زارع چاهوکی، م.ع.، 1389. روش های تحلیل چند متغیره در نرم افزار SPSS . انتشارات دانشگاه تهران. 35 صفحه.
4
ولی نسب، ت.، 1390. شناسایی گونه های مختلف سرپایان دریای عمان. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 67 صفحه.
5
یزدی صمدی، ب. و سیدطباطبایی، ب.، 1390. اساس علم ژنتیک کلاسیک و مولکولی. انتشارات دانشگاه تهران. 650 صفحه.
6
Anderson, F.E.; Bergman, A.; Cheng, S.H.; Pankey, M.S. and Valinassab, T., 2014. Lights out: the evolution of bacterial bioluminescence in Loliginidae. Hydrobiologia. Vol. 725, pp: 189-203.
7
Borges, T.C., 1995. Discriminant analysis of geographic variation in hard structures of Todarodes sagittatus from the North Atlantic. Marine Science Symposia. Vol. 199, pp: 433-440.
8
Chen, X.; Lu, H.; Liu, B.; Chen, Y.; Li, S. and Jin, M., 2012. Species identification of Ommastrephes bartramii, Dosidicus gigas, Sthenoteuthis oualanieeusis and Illex argentinue (Ommastrephidae) using beak morphological variables. Scientia Marina. Vol. 73, No. 3, pp: 473-481.
9
FAO Yearbook. 2010. Fishery statistics-capture production 86. Rome: Food and Agriculture organization of the United Nations. 200 p.
10
Jereb, P. and Roper, C.F.E., 2010. Cephalopods of the world. Volume 2. FAO Species Catalogue Foe Fishery Purposes. 610 p.
11
Liao, C.H.; Liu, T.Y. and Hung, C.Y., 2010. Morphometric variation between the Swordtip (Photololigo edulis) and Mitre (P. chinensis) squids in the waters off Taiwan. Journal of marine science and technology. Vol. 18, No. 3, pp: 405-412.
12
Silas, E.G.; Nair, P. and Sarvesan, R., 1982. New record of a Loligind squid, Doryteuthis sibogae (Cephalopoda: Loliginidae), From Indian waters. Central Marine Fisheries research Institue. pp: 281-287.
13
Sims, D.W.; Genner, M.J.; Southward, A.J. and Hawkins, S.J., 2001. Timing of squid migration reflects North Atlantic climate variability. Proceedings of Royal Society B. No. 268, pp: 2607-2611.
14
Smith, J.M.; Macleod, C.D; Valavanis, V.; Hastie, L.; Valinassab, T.; Bailey, N.; Santos, M.B. and Pierce, G.J., 2013. Habitat and distribution of post-recruitlife stage of the squid Loligo forbesii. Deep Sea Research. Vol. 95, pp: 145-159.
15
Thioulouse, J.; Chessel, D.; Doledec, S. and Olivier, J.M., 1997. ADE- 4: ecological data analysis: exploratory and euclidean methods in environmental Sciences. University of Lyon, Lyon. 119 p.
16
Zakaria, M.Z., 2000. Age and growth studies of oceanic squid, Sthenoteuthis oualaniensis using Statoliths in the south China Sea, Area III, western Philippines. Southeast Asian Fisheries Development Center. pp: 118-134.
17
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تغییرات فصلی آنزیمگلوتاتیون اس ترانسفراز کاتالاز و استیل کولین استراز در اندازههای مختلف صدف دوکفهای مرواریدساز Pinctada radiata
تحقیق حاضر جهت اندازهگیری میزان غلظت آنزیم گلوتاتیون اس ترانسفراز کاتالاز و استیل کولین استراز به عنوان نشانگرهای آلاینده فلزات سنگین در صدف دوکفهای مروارید ساز محار (Pinctada radiata) انجام گرفته است. نمونه برداری از بهار تا زمستان سال 1392 به روش غواصی در ایستگاههای لاوان، هندورابی و نخیلو انجام شد که در طی نمونه برداری صدف های با اندازه کوچک (4-1سانتیمتر) و بزرگ (6-4 سانتیمتر) جمعآوری گردیدند. برای اندازهگیری میزان غلظت فلزات سنگین از روش استاندارد Moopam، برای اندازهگیری آنزیم گلوتاتیون اس ترانسفراز از روش Habig، برای اندازهگیری آنزیم استیل کولین استراز از روش Ellman و برای اندازهگیری غلظت آنزیم کاتالاز از روش Abei استفاده گردید. میزان غظت آنالیز فلزات سنگین نیکل، کادمیوم و سرب در بافت نرم صدف محار (Pinctada radiata) در هر سه ایستگاه به ترتیب 0/12±0/58 و 0/04±1/86 و 0/30±1/94 قسمت در میلیون میباشد، که نتایج نشان داد غلظت فلز سرب در رسوبات ایستگاه دارای اختلاف معنی دار میباشد. غلظت آنزیم استیل کولین استراز در ایستگاههای مختلف و در بین اندازههای بزرگ و کوچک و در بین دو فصل اختلاف معنی داری با یکدیگر نداشتند. تغییرات دو آنزیم کاتالاز و گلوتاتیون اس ترانسفراز تقریباً مشابه یکدیگر بوده و ایستگاه و فصل هر دو پارامتر اختلاف معنی داری بر میزان غلظت این آنزیمها داشتند. تغییرات فصلی آنزیمهای آنتی اکسیدان (با فرض ثابت بودن شوری و اکسیژن) به سن، چرخه تولیدمثل، در دسترس بودن میزان غذا و دمای آب مرتبط است. با افزایش دما در فصل گرم میزان آنزیمهای آنتی اکسیدان افزایش یافته، با افزایش دما و فراوانی غذا در محیط ممکن است میزان آنزیمهای آنتی اکسیدان افزایش یابد. با توجه به میزان کم آلایندههای فلزات سنگین در مناطق مورد مطالعه، سطح پایین تری از آلایندهها در بافت صدف محار (Pinctada radiata) از نظر استاندارهای جهانی مشاهده گردید و ارتباط قوی نیز بین میزان این آلاینده فلزات سنگین در بافت صدف محار (Pinctada radiata) و میزان آنزیمهای مورد مطالعه مشاهده نشد، لذا میزان آلایندههای گونه مورد مطالعه در حد طبیعی میباشد و گونه در وضعیت سالمی به سر میبرد.
http://www.aejournal.ir/article_88467_f98ca8d6c57cdd571b3f62fb83fb202c.pdf
2018-12-22
519
530
Pinctada radiata
خلیج فارس
آنزیم گلوتاتیون اس ترانسفراز
استیل کولین استراز
کاتالاز
فلزات سنگین
الهه
علی عسگری
e.asgari@gmail.com
1
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران
AUTHOR
علی
ماشینچیان مرادی
ali2m@yahoo.com
2
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
فریبرز
احتشامی
ehteshamei@yahoo.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
شهلا
جمیلی
shahlajamili45@yahoo.com
4
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
محمد
ربانی
mhd_rabani@yahoo.com
5
گروه شیمی دریا، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
اسماعیلی تاجیک، ف.، 1388. بررسی سطوح آنزیمهای ضد اکسیداسیون در بارناکل به عنوان شاخص زیستی آلودگی فلزات سنگین (Ni,V,Cd) در خلیج فارس-جزیره خارک، پایان نامه کارشناسی ارشد مدیریت محیط زیست. دانشکده محیط زیست و انرژی. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم وتحقیقات.
1
امتیازجو، م.، 1379. بررسی تنوع زیستی و پتانسیل تولید مواد زیستی فعال از سیانوباکتریهای خلیج فارس. پایاننامه دکتری بیولوژی دریا. دانشگاه آزاد واحد علوم و تحقیقات تهران.
2
حسین زاده صحافی، ه.؛ دقوقی، ب. و رامشی، ح.، 1379. اطلس نرم تنان خلیج فارس. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 248 صفحه.
3
حیدری چهارلنگ،ب.؛ ریاحی بختیاری،ع. و یاوری، و.، 1390. بررسی غلظت فلزات سنگین (Pb,Zn,Cd and Cu) در رسوبات سطحی سواحل بندرلنگه. پنجمین همایش تخصصی مهندسی محیط زیست.
4
دبیری، م.، 1379. آلودگی محیط زیست آب، خاک، هوا، صوت. انتشارات اتحاد. ۴۰۰ صفحه.
5
ذوالقدری قره بلاغ، ص.، 1382. اثرات فلزات سنگین بر روی آبزیان. پایان نامه کارشناسی. دانشکده علوم و فنون دریایی. دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال.
6
صفاهیه، ع.؛عبداله پورمنیخ، ف. و سواری، ا.، 1390. غلظت فلزات سنگین در رسوب و ماهی شبه شوریده (Johnius belangerii) صید شده از خور موسی در استان خوزستان. مجله شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد آزادشهر.
7
مرتضوی، ش.؛ اسماعیلی ساری، ع. و ریاحی بختیاری، ع.، 1384. تعیین نسبت نیکل و وانادیوم ناشی از آلودگیهای نفتی در صدف خوراکی و مرواریدساز در حاشیه سواحل، استان هرمزگان. مجله منابع طبیعی. جلد 58، شماره1، صفحات 11 تا 22.
8
Aebi, H., 1974. Catalase. In: Bergmeyer HV, editor. Methods in enzymatic analysis. New York: Acadamic press. Vol 2.
9
Ahmad, S.; Pritsos, C.A.; Bowen, S.M.; Heisler, C.R.; Blomquist, G.J. and Pardini, R.S., 1988. Subcellular distribution and activities of superoxide dismutase, Catalase, glutathione peroxidase and glutathione reductase in the southern armyworm, spodopthera eridania. Arch Insect Bio Chem Physiol. Vol. 7, pp: 173-186.
10
Ahmad, A.K. and Shuhaimi-Othman, M., 2010. Heavy metal concentration in sediments and fishes from Lake Chini, Pahang, Malaysia. Journal of Biological Sciences. Vol. 10, No. 2, pp: 93-100.
11
Al-Mafda, H.; Abdel-Moati, M.A.R. and Al-Gimaly, F.H., 1998. Pinctada radiate (Pearl Oyster): A Bioindicator for Metal Pollution Monitoring in the Qatari Waters. Bull. Environm. Contam Toxicol. Vol. 60, pp: 245 - 251.
12
Bagnyukova,T.V.;Chahrak,O.I.andLushchak,V.I.,2006. Coordinated response of goldfish antioxidant defenses to environmental stress. Aquat. Toxicol. Vol. 78, pp: 325-331.
13
Banni, M.; Negri, A.; Dagnino, A.; Jebali, J.; Ameur, S. and Boussetta, H., 2010. Acute effect sofbenzo[a] pyreneon digestive gland enzymatic biomarkers and DNA damageonmussel Mytilus galloprovincialis. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 73, pp: 842-848.
14
Borković, S.S.; Šaponjić, J.S.; Pavlović, S.Z.; Blagojević, D.P. and Milošević, S.M., 2005. The activity of antioxidant defence enzymes in the mussel Mytilusgalloprovincialis from the Adriatic Sea. Comp Biochem Physiol. Vol. 141, pp: 366-374.
15
Borg, D.C. and Schaich, K.M., 1984. Cytotoxicity from coupled redox cycling of autoxidizing xenobiotics and metals. Israel J. Chem. Vol. 24, pp: 38-53.
16
Cailleaud, K.; Maillet, G.; Budzinski, H.; Souissi, S. and Forget-Leray, J., 2007. Effects of salinity and temperature on the expression of enzymatic biomarkers in Eurytemora affinis (Calanoida, Copepoda). Comp. Biochem. Physiol. Vol. 147, pp: 841-849.
17
Clark, R.B., 2001. Marine Pollution. 5th Edition, Oxford University Press. 237 p.
18
Cossu, C.; Doyotte, A.; Babut, M.; Exinger, A. and Vasseur, P., 2000. Antioxidant biomarkers in freshwater bivalves, unio tumidus, in response to different contamination profiles of aquatic sediments. Ecotoxicol. Environ. Saf. Vol. 45, pp: 106-121.
19
Ellman, G.L.; Courtney, K.; Andres, D.; Jr, V. Featherstone, R.M., 1961. A new and rapidcolorimetric determination of acetylcholinesterase activity, Biochem. Pharmacol. Vol. 7, pp: 88-95.
20
Elumalai, M. and Balasubramanian, M.P., 1999. Influence of naphthalene on esterase activity during vitellogenesis of marine edible crab, Scylla sarrata. Bull Environ Contam Toxicol. Vol. 62, No. 6, pp: 743-748.
21
Frenzilli,G.;Lasagna,C.;Perrone,E.andRoggie, P., 2004. enotoxicity biomarkers in Mytilus galloprovincialis: wild versus caged mussels. Mutat. Res. Vol. 552, pp: 153-162.
22
Jing, R.;Bolshakov,V.I. and Flavell, A.J., 2007. The tagged microarray marker (TAM) method for high throughput detection of single nucleotide and indel polymorphisms. Nat. Protoc. Vol. 2, pp: 168-177.
23
Geret, F.; Serafim, A.; Barreira, L. and Bebianno, M.J., 2002. Effect of cadmium on antioxidant enzyme activities and lipid peroxidation in the gills of the clam Ruditapes decussatus. Biomarkers. Vol. 7, pp: 242-256.
24
Giarratano, E.; Gil, M.N. and Malanga, G., 2013. Assessment of antioxidant responses and trace metal accumulation by digestive gland of ribbed mussel Aulacomya atra atra from Northern Patagonia. Ecotoxicol Environ Saf. Vol. 92, pp: 39-50.
25
Giguère, A.; Couillard, Y.; Campbell, P.G.C.; Perceval, O.; Hare, L.; Pinel-Alloul, B. and Pellerin, J., 2003. Steady-state distribution of metals among metallothionein and other cytosolic ligands and links to cytotoxicity in bivalves living along a polymetallic gradient. Aquat Toxicol Vol. 64, pp: 185-200.
26
Habig, W.H.; Pabst, M.J. and Jakoby, W.B., 1974. Glutathione-S-transferases, the first enzymatic step in mercapturic acid formation. J. Biol. Chem. Vol. 249, pp: 7130-7139.
27
Hagger, J.A.; Lowe, D.; Dissanayake, A.; Jones, M.B. and Galloway, T.S., 2010. The influence of seasonality on biomarker responses in Mytilus edulis. Ecotoxicology. Vol. 19, pp: 953-962.
28
Hayes, J.D. and Pulford, D.J., 1995. The Glutathione-S transferase family: regulation of GST and the contribution of the isoenzymes to cancer chemoprevention & drug resistance. Crit. Review Biochem. Molecul. Biol. Vol. 30, pp: 445-600.
29
Hédouin, L.; Metian, M.; Teyssié, J.L.; Fowler, S.W.; Fichez, R. and Warnau, M., 2006. Allometric relationships in the bioconcentration of heavy metals by the edible tropical clam Gafrarium tumidum. Science of the Total Environment. Vol. 366, pp: 154-163.
30
Khessiba, A.; Hoarau, P.; Gnassia-Barelli, M.; Aissa, P. and Roméo, M., 2001. Biochemical response of the mussel Mytilus galloprovincialis from Lake Bizerte (Tunisia) with exposure to chemical pollutants Arch. Environ. Contam. Toxicol. Vol. 40, pp: 222-229.
31
Krogh, M. and Scanes, P., 1996. Organochlorine compound and trace metal contaminants in fish near Sydney, s Ocean out full. Marin Pollution Bull. Vol. 33, No. 7-12, pp: 213-235.
32
Lamanso, R.; Cheung, Y. and Chan, K.M., 1991. Metal concentration in the tissues of rabbit fish collected from Tolo Harbour in Hong kong, Marine Pollution Bulletin. Vol. 39, pp: 123-134.
33
Lima, I. and Moreira, S.M., 2007. Biochemical responses of the marine mussel Mytilus galloprovincialis to petro chemical environmental contamination along the North western cost of Portugal. Chemosphere. Vol. 66, pp: 1230-1242.
34
Livingstone, D.R., 1993. Contaminant stimulated reactive oxygen species production and oxidative damage in aquatic organisms. Mar Pollut Bull. Vol. 42, pp:656-666.
35
Lukyanova, O.N. and Korchagin, V.P., 2011. Glutathione-S-transferase as a molecular biomarker of the state of marine organisms influenced by anthropogenic pressure Biology Bulletin. Vol. 38, No. 4, 386 p.
36
Nahrgang, J.; Camus, L.; Gonzalez, P.; Jönsson, M. and Hop, H., 2010. Biomarker responses in polar cod (Boreogadus saida) exposed to dietary crude oil, Aquatic Toxicology. Vol. 96, No. 1, pp: 77-83.
37
Páez-Osuna, F. and Ruíz-Fernández, C., 1995. Trace metals in the mexican shrimp Penaeus vannamei from estuarine & marine environments. Archives of environmental Contamination and Toxicology. Vol. 87, No. 2, pp: 243-247.
38
Regoli, F.; Orlando, E.; Mauri, M.; Nigro, M. and Cognetti, G.A., 1995. Heavy metal accumulation and calcium content in the bivalve Donacilla cornea. Mar. Ecol. Prog. Ser. Vol. 74, pp: 219-224.
39
Regoli, F.; Winston, G.W.; Gorbi, S.; Frenz illi, G.; Nigro, M.; Corsi, I. and Focardi, S., 2004. Integrating enzymatic responses to organic chemical exposure with total oxyradical absorbing capacity and DNA damage in the European eel Anguilla anguilla. Environ. Toxicol. Chem. Vol. 22, pp: 56-65.
40
Reid, D.J. and Maefarlane, G.R., 2003. Potential biomarkers of crude oil exposure in the gastropod mollusc, Austrocochlea poecata: Laboratory and manipulative field studies. Environmental Pollution. Vol. 12, pp: 147-155.
41
Rosa, M.M.; Amila, E.M. and Ana, S., 2005. Antioxidant defencees in fish: Biotic and abiotic factors. Review in fish Biology and fisheries. Vol. 15, pp: 75-88.
42
Rudneva,I.I.;Zavyalov,A.V.andSkuratovskaya,E.N.,2010, The role of molecular systems in protective reactions of fish infected by parasites. Ryb. gosp-vo Ukraini, Russian.
43
Santovito, G.; Piccinni, E.; Cassini, A.; Irato, P. and Albergoni, V., 2005. Antioxidant responses of the Mediterranean mussel, Mytilus galloprovincialis, to environmental variability of dissolved oxygen. Comp. Biochem. Physiol. Vol. 140, pp: 321-329.
44
Sifi, K.; Amira, A. and Soltani, N., 2013. Oxidative stress and biochemical composition in Donax trunculus (Mollusca, Bivalvia) from the gulf of Annaba (Algeria). Adv Environ Biol. Vol. 7, No. 4, pp: 595-604.
45
Stohs, S.J. and Bagchi, D., 1995. Oxidative mechanisms in the toxicity of metal ions. Free Radic Biol Med. Vol. 18, pp: 321-336.
46
Torres, M.A.; Dangl, J.L. and Jones, J.D., 2002. Arabidopsis p91phox homologues AtrbohD and AtrbohF are required for accumulation of reactive oxygen intermediates in the plant defense response. Proc Natl Acad Sci USA. Vol. 99, pp: 517-522.
47
Viarengo, A.; Canesi, L.; Pertica, M. and Livingstone, D.R., 1991. Seasonal variations in the antioxidant defence systems and lipid peroxidation of the digestive gland of mussels. Comp. Biochem. Physiol. Vol. 100, pp: 187-190.
48
Vlahogianni, T., Dassenakis, M.; Scoullos, M.J. and Valavanidis, A., 2007. Integrated Use of Biomarkers (Superoxide Dismutase, Catalase and Lipid Peroxidation) in Mussels Mytilus galloprovincialis for Assessing Heavy Metals’ Pollution in Coastal Areas from the Saronikos Gulf. Journal of Chemical Ecology. Vol. 23, pp: 361-371.
49
Wright, D.A., 1995. Trace metal and major ion interactions in aquatic animals. Marine Pollution Bull. Vol. 31, pp: 8-18.
50
ORIGINAL_ARTICLE
گزارش نخستین مشاهده Capitella sp (کرم های حلقوی: پرتاران) در جنوب دریای خزر
تجمعات پرتاران در آبهای کم عمق جنوب دریای خزر مورد مطالعه قرار گرفت. نمونه های رسوب از مناطق ساحلی گمیشان، خلیج گرگان، کیاشهر، آستارا و تنکابن (عمقهای 1، 3 و5 متر) با گرب ون-وین (0/0625 مترمربع)، در زمستان 1395 و تابستان 1396 جمعآوری شد. سپس، نمونههای کرمی با استفاده از الک روزنه 0/5، 1 و 2 میلیمتر، غربال و در گلوتارالدهید 4% ریخته شدند. در نتیجه بررسی مورفولوژیک مشخص شد که کرم پرتار Capitella sp. از خانواده Capitellidae در مناطق گمیشان، خلیج گرگان و تنکابن حضور دارد. نمونههای مورد مطالعه، بدون ضمایم آبششی و چشم، و دارای پروستومیوم کوتاه و مخروطی شکل بودند و قطعه سینه ای در آنها متشکل از یک حلقه پریستومیوم بدون کیتا و کتیگرهای دارای تارهای مویین بود. هر یک از کتیگرهای 7-1، 8-1 یا تمام آنها چندین تار مویین داشتند. اما کتیگرهای شکمی، بهجای تارهای مویین، دارای قلابهای روپوشدار بودند. خارهای تناسلی نرها و حفره تناسلی مادهها بین کتیگرهای 9-8 قرارداشتند. قطعه دمی نیز فاقد ضمایم بود. جنس Capitella و خانواده Capitellidae، برای نخستین بار از دریای خزر گزارش میشوند.
http://www.aejournal.ir/article_85956_3e3b1f0198af566f3bbf6a7e3321c57d.pdf
2018-12-22
531
536
پرتاران
گونه مهاجم
گونه بیگانه
امید
روشن
om46row@gmail.com
1
اداره کل حفاظت محیط زیست گلستان، سازمان حفاظت محیط زیست، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
نسرین
سخایی
sakhaei@kmsu.ac.ir
2
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
AUTHOR
حسین
ذوالقرنین
zolgharnein@kmsu.ac.ir
3
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
AUTHOR
حامد
پاک نژاد
4
گروه شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
مهرشاد
طاهری
mehrshadtaheri@yahoo.com
5
مرکز اقیانوس شناسی تنگه هرمز، موسسه ملی اقیانوس شناسی و علوم جوی ایران، بندرعباس، ایران
AUTHOR
بیرشتین، ی.آ.، 1379. اطلس بیمهرگان دریای خزر. مترجم: لودمیلا دلیناد و فضه نظری. موسسه تحقیقات شیلات ایران. صفحات 141 تا 154.
1
طاولی، م. و موسوی، م.، 1391. شناسایی و تعیین تراکم و زیتوده پرتاران در ساحل شهرستان چالوس (دریای خزر). مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. دوره 7، شماره 4، صفحات 104 تا 117. قابل دسترس از: http://jmstr.iau-tnb.ac.ir..
2
طاهری، م.؛ سیف آبادی، ج.؛ ابطحی، ب. و یزدانی فشتمی، م.، 1389. پویایی جمعیت، پراکنش و چرخه تولیدمثلی کرم پرتار Nereis diversicolor در ساحل شهرستان نور- جنوب دریای خزر. اقیانوس شناسی. سال 1، صفحات 27 تا 33. قابل دسترس از: http://joc.inio.ac.ir..
3
طاهری، م.؛ سیف آبادی، ج.؛ ابطحی، ب. و یزدانی فشتمی، م.، 1382. گزارش اولین مشاهده Spionidae (کرم پرتار) در سواحل شهرستان نور- جنوب دریای خزر. مجله علوم و فنون دریایی. دوره 2، شماره 3-2، صفحات 83 تا 84. قابل دسترس از: www.sid.ir.
4
Blake, A.J., 2009. Redescription of Capitella capitata (Fabricius) from west Green land and designation of a neotype (Polychaeta, Capitellidae). Available from: http://www.researchgate.net. Accessed in: Dec 3, 2018.
5
Caspian Sea Polychaetes. 2018. Available from: http://www.zin.ru. Accessed in: Nov 10, 2018.
6
Dean, K.H., 2008. The use of polychaetes (Annelida) as indicator species of marine pollution: a review. Revista de Biologia Tropical. Vol. 56, pp: 11-38. Available from: http://www.researchgate.net. Accessed in: Dec 3, 2018.
7
Eklöf, J., 2010. Taxonomy and phylogeny of polychaetes. University of Gothenburg, Department of Zoology. Available from: https://scholar.google.com. Accessed in Nov 2, 2018.
8
Fauchald, K., 1977. The Polychaete Worms Definition and Keys to the Orders, Families and Genera. Natural History Museum of Los Angeles County. Science Series. Vol. 28, pp: 31-36. Available from: http://www.marinespecies.org. Accessed in: Nov 5, 2018.
9
Garcia-Garza, E.M.; Leon-Gonzalez, A.J. and Harris, H.L., 2011. Review of the Capitellidae (Annelida, Polychaeta) from the Eastern Tropical Pacific region, with notes on selected species. ZooKeys. Vol. 151, pp: 17-18. Available from: https://zookeys.pensoft.net. Accessed in: Nov 30, 2018.
10
Ghasemi, A.F., 2014. Changes in the quantitative distribution of Caspian Sea polychaetes: Prolific fauna formed by non- indigenous species. Journal of Grate Lakes Research, Vol. 40, pp: 692-698. Available from: http://scholar.google.com. Accessed in: May 22, 2018.
11
Gözler, M.A.; Agirbas, E. and Sahin, C., 2009. Spatial and Temporal Distribution of Nereidae (Polychaeta: Annelida) along the Coast of the Turkish Eastern Black Sea in the Upper-Infralittoral Zone. Available from: https://scholar.google.com. Accessed in Nov. 2, 2018. https://www.researchgate.net. Accessed in: Sep 25, 2018.
12
Hutchings, P., 1998. Biodiversity and functioning of polychaetes in benthic sediments. Biodiversity & Conservation. Vol. 7, No. 9, pp: 1133-1145. Available from: https://link.springer.com. Accessed in Nov 3, 2018.
13
Maximov, A. and Norkko, J., 2015. Context-dependent consequences of Marenzelleria spp. (Spionidae: Polychaeta) invasion for nutrient cycling in the Northern Baltic Sea. Oceanologia Vol. 57, pp: 342-348. Available from: https://www.sciencedirect.com. Accessed in Nov10, 2018.
14
Kurt-Şahin, G. and Çinar, E.M., 2012. A check-list of polychaete species (Annelida: Polychaeta) from the Black Sea. Journal of Black Sea/Mediterranean Environment. Available from: https://www.researchgate.net. Accessed in: Aug 20, 2018.
15
Magalhaes, F.W. and Bailey-Brock, H.J., 2012. Capitellidae Grube, 1862 (Annelida: Polychaeta) from the Hawaiian Islands with description of two new species. Zootaxa. Vol. 3581, No. 1, pp: 1-52. Available from: https://www.researchgate.net. Accessed in Sep10, 2018.
16
Silva, F.C.; Seixas, C.V.; Barroso, R. and Domenico, D.M., 2017. Journal Plos. Demystifying the Capitella capitata complex (Annelida, Capitellidae) diversity by morphological and molecular data along the Brazilian coast. Available from: https://journals.plos.org. Accessed in Nov10, 2018.
17
Sakri, I.; Wan Mohd Rauhan, W.H.; Zaleha, K.; Zuliatini, M.J.; Mohamad, Z.Z. and Sukree, H., 2006. Seasonal abundance of benthic communities in coral areas of Karah Island, Terengganu, Malaysia. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 6, No. 2. Available from: https://scholar.google.com. Accessed in Nov 3, 2018.
18
Sivadas, K.S.; Ingole, S.B. and Nanajkar, M., 2010. Benthic polychaetes as good indicators of anthropogenic impact. Indian Journal of Geo-Marine Sciences (IJMS). Available from: https://www.researchgate.net. Accessed in Sep10, 2018.
19
World Register of Marine Species (WoRMS). 2018. Available from: http://www.marinespecies.org. Accessed in: Dec 7, 2018.
20
ORIGINAL_ARTICLE
اولین گزارش گونه ( Nais variabilis Piguet, 1906 (Annelida: Oligochaeta: Naididae و الگوی پراکنش زمانی و مکانی آن در مصب رودخانههای چشمهکیله تنکابن و سردآبرود چالوس (حوضه جنوبی دریای خزر)
کرم کم تار Nais variabilisدر زیستگاههای آبشیرین و لبشور بسیار متداول و دارای پراکنش جهانی میباشد. این گونه که قبلاً از فون آبشیرین ایران و سواحل جنوبی دریای خزرگزارش نشده بود، در هنگام بررسی لیمنولوژیکی رودخانه و مصب چشمهکیله و سردآبرود در امتداد سواحل ایرانی دریای خزر یافت گردید. نمونه برداری به مدت یکسال به صورت دو ماه یک بار، از آبان ماه 1393 تا شهریور ماه 1394 در سه ایستگاه در هر مصب (S1 در اکوسیستم رودخانه، S2 در اکوسیستم مصب و S3 در اکوسیستم دریا) با استفاده از نمونه بردارهای گرب مدل ون وین (با سطح مقطع 0/03 مترمربع) و سوربر (با سطح مقطع 0/1 مترمربع با چشمههای به ابعاد 0/2 میلیمتر) در سه تکرار انجام شد. نتایج حاصل از پراکنش زمانی نشان میدهد که بیش ترین و کم ترین تراکم و تودهزنده این گونه بهترتیب در آبان ماه (79/8±118/8 تعداد در مترمربع و 0/034±0/075 گرم در مترمربع) و شهریور ماه (9/8±26/5 تعداد در مترمربع و 0/005±0/015 گرم در مترمربع) بود و دارای اختلاف معنیداری میباشند (0/05<P). پراکنش مکانی این گونه در بین ایستگاههای مورد بررسی اختلاف معنیداری را نشان داد (0/05>P) به طوریکه ایستگاههای رودخانهای تراکم و تودهزنده (83/3±139/4 تعداد در مترمربع و 0/029±0/08 گرم در مترمربع) بیش تری نسبت به ایستگاههای مصبی (10/6±21 تعداد در مترمربع و 0/006±10/05 گرم در مترمربع) و ایستگاههای دریایی (0±0 تعداد در مترمربع و 0±0 گرم در مترمربع) داشتهاند. تراکم و تودهزنده این گونه در رودخانه و مصب چشمهکیله بیش تر از سردآبرود بود. همبستگی معنیداری(0/05>P) بین تراکم و توده زنده N. variabilis با عوامل محیطی در آب (دما و شوری) و رسوب (دانهبندی و مواد آلی کل) مشاهده گردید.
http://www.aejournal.ir/article_88469_e64fe9f62fc2e77c5bb8037e9573144a.pdf
2018-12-22
537
548
اولین گزارش
Nais variabilis
چشمهکیله
سردآبرود
دریای خزر
میثم
طاول کتری
meysamtavoli@gmail.com
1
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران
AUTHOR
سید محمدرضا
فاطمی
reza_fatemi@hotmail.com
2
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران
AUTHOR
رضوان
موسوی ندوشن
mousavi.nadushan@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد
خدابخشی
mkhbakhshi@yahoo.com
4
گروه ریاضی، دانشکده علوم ریاضی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
AUTHOR
افشین، ی.، 1373. رودخانههای ایران. جلد دوم، چاپ اول، وزارت نیرو، شرکت مهندسین مشاور جاماب. تهران. 575 صفحه.
1
Ahmadi, R.; Aliyev, A.; Seidgar, M.; Bayramov, A. and Ganji, S., 2012. Macroinvertebrate communities differences on riverine parts and reservoirs of Zarrineh River. American Journal of Agricultural and Biological Sciences. Vol. 7, No. 1, pp: 71-75.
2
Alves, R.G. and Gorni, G.R., 2007. Naididae species (Oligochaeta) associated aquatic macrophytes in two reservoirs (São Paulo, Brazil). Acta Limnologica Brasiliensia. Vol. 19, No. 4, pp: 407-413.
3
Aliyev, A. and Ahmadi, R., 2010. Biodiversity of benthic invertebrates in Aras River. Iranian Scientific Fisheries Journal. Vol. 19, pp: 131-142.
4
Ardalan, A.A.; Mooraki, N. and Sadeghi, M.S., 2011. Occurrence of Ophidonais serpentina in Potamon persicum from Jajrood River, Iran. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 10, No. 1, pp: 177-180.
5
Arslan, N.P. and Sahin, Y., 2003. Nine new Naididae (Oligochaeta) species for Sakarya River, Turkey. Turkish Journal of Zoology. Vol. 27, pp: 27-38.
6
Arslan, N.; Shahin, Y.; Filik, C.; Yılmaz, V. and Öntürk, T., 2007. Diversity and distribution of benthic invertebrates community structure in relation to environmental parameters in the littoral zone of Musaözü Dam Lake, Eskiehir. Journal of Applied Biological Science. Vol. 1, pp: 67-75.
7
Arslan, N.; Kara, D.; Kokcu, C.A. and Ruzgar, M., 2014. Aquatic Oligochaeta (Annelida) of Dam Lakes Çatören and Kunduzlar (Turkey). Zoosymposia. Vol. 9, pp: 70-76.
8
Basim, Y.; Farzadkia, M.; Jaafarzadeh, N. and Hendrickx, T., 2012. Sludge reduction by Lumbriculus variegatus in Ahvaz wastewater treatment plant. Iranian Journal of Environmental Health Science & Engineering. Vol. 9, No. 4, 5 P.
9
Baturina, M.; Timm, T. and Loskutova, O., 2014. Oligochaete (Annelida, Clitellata) сommunities in lakes of the Ural Mountains (Russia). Zoosymposia. Vol. 9, pp: 77-94.
10
Behrend, R.D.L.; Takeda, A.M.; Gomes, L.C. and Fernandes, S.E.P., 2012. Using oligochaeta assemblages as an indicator of environmental changes. Brazilian Journal of Biology. Vol. 72, pp: 873-884.
11
Brinkhurst, R.O. and Jamieson, B.G.M., 1971. Aquatic Oligochaeta of the World. University of Toronto, Canada. 860 P.
12
Brinkhurst, R.O. and Wetzel, M.J., 1984. Aquatic Oligochaeta of the world: supplement a catalogue of new freshwater species, descriptions and revisions. Canadian Technical Report of Hydrography and Ocean Sciences. Vol. 44, 101 P.
13
Brinkhurst, R.O., 1986. Guide to the freshwater aquatic Microdrile oligochaetes of North America. Canadian Special Publication of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 84, 259 P.
14
Buchanan, J.B., 1984. Sediment analysis. Blackwell Scientific Publications, Oxford, England. pp: 41-65.
15
Collado, R. and Schmelz, R.M., 2001. Oligochaete distribution patterns in two German hardwater lakes of different trophic state. Limnologica. Vol. 31, No. 4, pp: 317-328.
16
Corbi, J.J.; Trivinho-Strixino, S. and Alves, R.G., 2005. Records of oligochaetes in freshwater sponges, on bryozoarians and on colonial hydrozoans from Brazil. Brazilian Journal of Biology. Vol. 65, No. 1, pp: 187-188.
17
Davis, R.J., 1982. New records of aquatic Oligochaeta from Texas, with observations on their ecological characteristics. Hydrobiologia. Vol. 96, pp: 15-29.
18
Gorni, G.R. and Alves, R.G., 2006. Naididae (Annelida, Oligochaeta) associated with Pomacea bridgesii (Reeve) (Gastropoda Ampullaridae). Revista Brasileira de Zoologia. Vol. 23, No. 4, pp: 1059-1061.
19
Gorni, G.R. and Alves, R.G., 2007. Naididae (Annelida, Oligochaeta) associated with briophytes in Brotas, State of Sao Paula, Brazil. Revista Brasileira de Zoologia. Vol. 24, No. 2, pp: 518-519.
20
Gray, J.S., 1981. The ecology of marine sediments. Cambridge University Press, New York. 185 P.
21
Jablonska, A. and Pesic, V., 2014. Five species of aquatic oligochaetes new to Iran with an updated checklist. Oceanological and Hydrobiological Studies, International Journal of Oceanography and Hydrobiology. Vol. 43, No. 1, pp: 100-105.
22
Learner, M.A.; Lochhead, G. and Hughes, B.D., 1978. A review of the biology of the British Naididae (Oligochaeta) with emphasis on the lotic environment. Freshwater Biology. Vol. 8, pp: 357-375.
23
Lee, J. and Jung, J., 2015. Six Korean new records of the Nais species (Annelida, Clitellata, Naididae). Korean Journal of Environmental Biology. Vol. 33, No. 2, pp: 153-159.
24
Loden, M., 1981. Reproductive ecology of Naididae (Oligochaeta). Hydrobiologia. Vol. 83, pp: 115-123.
25
McLachlan, A. and Brown, A.C., 2006. The ecology of sandy shores. Burlington, MA, USA: Academic Press. 373 P.
26
Martin, P.; Martinez-Ansemil, E.; Pinder, A.; Timm, T. and Wetzel, M.J., 2008. Global diversity of oligochaetous clitellates (Oligochaeta; Clitellata) in freshwater. Hydrobiologia. Vol. 595, pp: 117-127.
27
Martinovic-Vitanovic, V.; Djikanovic, V.; Obradovic, S. and Kalafatic, V., 2007. Composition and structure of the Oligochaeta (Annelidae) in benthic assemblages of the Danube River in the Belgrade region during May and October of 2004. Ekológia (Bratislava). Vol. 26, No. 2, pp: 174-189.
28
Nazarhaghighi, F.; Timm, T.; Mousavi Nadoushan, R.; Shabanipour, N.; Fatemi, M.R. and Mashinchian Moradi, A., 2014. Oligochaetes (Annelida, Clitellata) in the Anzali International Wetland, north-western Iran. Estonian Journal of Ecology. Vol. 63, No. 3, pp: 130-144.
29
Patricio, J.; Adao, H.; Neto, J.M.; Alves, A.S.; Traunspurger, W. and Marques, J.C., 2012. Do nematode and macrofauna assemblages provide similar ecological assessment information? Ecological Indicators. Vol. 14, pp: 124-137.
30
Pennack, R.W., 1989. Freshwater invertabrates of the United States, Protozoa to Mullusca. 3rd Edition The Ronald Press Company, New York, NY.
31
Pinder, A.M. and Brinkhurst, R.O., 1994. A preliminary guide to the identification of the microdrile Oligochaeta of Australian inland waters. Cooperative research center for freshwater ecology, Albury. Vol. 1, 144 p.
32
Pinder, A., 2010. Tools for identifying selected Australian aquatic oligochaetes (Clitellata: Annelida). Museum Victoria Science Reports. Vol. 13, pp: 1-26.
33
Schenkova, J. and Helesic, J., 2006. Habitat preferences of aquatic Oligochaeta (Annelidae) in the Rokytna River, Czech Republic - a small highland stream. Hydrobiologia. Vol. 564, pp: 117-126.
34
Smith, D.G., 2001. Pennak’s freshwater invertebrates of the United States, Porifera to Crustacea. Fourth edition, Johns Wiley & Sons. 664 P.
35
Stephenson, J., 1920. On a collection of Oligochaeta from the lesser known parts of India and from eastern Persia. Memoirs of the Indian Museum. Vol. 7, No. 3, pp: 191-261.
36
Tas, M.; Kirgiz, T. and Arslan, N., 2011. Dynamics of Oligochaeta fauna in Sazlidere stream (Edirne, Turkey) with relation to environmental factors. Acta Zoologica Bulgarica. Vol. 63, No. 2, pp: 179-185.
37
Tavol Koteri, M.; Fatemi, S.M.R.; Mousavi Nadushan, R. and Khodabakhshi, M., 2017. First record of Nais elinguis Müller, 1773 (Annelida: Oligochaeta: Naididae), Spatio-temporal patterns of its population density and biomass production along two Estuaries in South Caspian Sea, Mazandaran province, Iran. Iranian Journal of Fisheries Sciences, Acceptance 30/01/2017, 003/1348, 17 P.
38
Timm, T. and Martin, P., 2015. Clitellata: OligochaetaIn. Rogers JHTC, editor. Thorp and Covich’s freshwater invertebrates (Fourth Edition). Academic Press, Boston. pp: 529-549.
39
Verdonschot, P.F.M., 1999. Micro-distribution of oligochaetes in a soft-bottomed lowland stream (Elsbeek; The Netherlands). Hydrobiologia. Vol. 406, pp: 149-163.
40
Wildsmith, M.D.; Rose, T.H.; Potter, I.C.; Warwick, R.M. and Clarke, K.R., 2011. Benthic macroinvertebrates as indicators of environmental deterioration in a large microtidal estuary. Marine Pollution Bulletin. Vol. 62, pp: 525-538.
41
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی کارآیی استفاده از روش بیوراک در کاشت و پرورش مرجان گونه Acropora calthrata در خلیج چابهار
تغییرات آب و هوایی و فعالیتهای انسانی در طول سالیان اخیر سبب از بین رفتن و کاهش سطح پوشش اکوسیستمهای مرجانی و کاهش کارآیی پروژههای حفاظت و بازسازی این اکوسیستمها گردیده است. از اینرو استفاده از تکنولوژیهایی نظیر زیست سازههای الکتریکی (بیوراک) جهت افزایش میزان رشد و بقاء مرجانها دارای اهمیت بهسزایی میباشد. در این راستا، کارآیی استفاده از روش بیوراک بر میزان رشد و بازماندگی قلمههای مرجان Acropora calthrataدر خلیج چابهار مورد بررسی قرار گرفته است. قلمههای مرجانی بر روی سازههای فلزی و در میدان الکتریکی بهمیزان 6 ولت در پروسه بیوراک قرار گرفته و میزان و کارآیی رشد و نرخ بازماندگی قلمههای مرجانی در طول دوره چهار ماهه مورد بررسی قرار گرفت. میانگین رشد مرجانها در سازه شاهد (غیربیوراک) ±0/23 5/25 سانتیمتر و در سازه بیوراک 0/29±12 سانتیمتر ثبت گردید. نتایج وجود اختلاف معنیدار بین میزان رشد قلمههای مرجانی در سازه بیوراک با سازه غیربیوراک را نشان میدهد (0/05<p). نتایج این تحقیق افزایش حدود دو برابری در میزان و همچنین نرخ رشد قلمههای مرجان A. calthrata در زمان حضور در میدان الکتریکی نسبت به نمونههای شاهد نشان میدهد. نتایج این تحقیق نشاندهنده تحریک رشد بالاتر مرجان A. calthrata توسط روش بیوراک است که میتواند استفاده از روش بیوراک را در طرحهای حفاظت و بازسازی مناطق مرجانی در خلیج فارس و دریای عمان توسعه دهد.
http://www.aejournal.ir/article_88492_7e812c082ab53e13d4718eb092889d2d.pdf
2018-12-22
549
558
بیوراک
خلیج چابهار
مرجان
Acropora calthrata
محمود
سینایی
oceanography.sina@gmail.com
1
گروه شیلات، واحد چابهار، دانشگاه آزاد اسلامی، چابهار، ایران
LEAD_AUTHOR
مهدی
بلوکی
lahijanjan@yahoo.com
2
معاونت دریایی، سازمان حفاظت محیط زیست ایران
AUTHOR
Bakti, L.A.A.; Virgota, A.; Damayanti, L.P.A.; Radiman, T.H.U.; Retnowulan, A.; Hernawati.; Sabil, A. and Robbe, D., 2012. Biorock Reef Restoration in Gili Trawangan, North Lombok, Indonesia. In: Goreau, T.J. and Trench, R.K., Eds., Innovative Methods of Marine Ecosystem Restoration, CRC Press, Boca Raton. pp: 59-80.
1
Bellwood, D.R.; Hughes, T.P.; Folke, C. and Nystrom, M., 2004. Confronting the coral reef crisis. Nature. Vol. 429, No. 6994, pp: 827-833.
2
Berger, N.; Haseltine, M.; Boehm, J.T. and Goreau, T.J., 2012. Increased Oyster Growth and Survival Using Biorock Technology. In: Goreau, T.J. and Trench, R.K., Eds., Innovative Methods of Marine Ecosystem Restoration, CRC Press, Boca Raton. pp: 141-150.
3
Eggeling, D., 2006. Electro-Mineral Accretion Assisted Coral Growth: An Aquarium Environment. Townsville Aquarium, Queensland. 21 p.
4
Fitri, D. and Rachman, M.A., 2012. Gorgonian Soft Corals Have Higher Growth and Survival in Electrical Fields. In: Goreau, T.J. and Trench, R.K., Eds., Innovative Methods of Marine Ecosystem Restoration, CRC Press, Boca Raton. pp: 105-111.
5
Goreau, T.J. and Hilbertz, W., 2005. Marine Ecosystem Restoration: Costs and Benefits for Coral Reefs. World Resource Review. Vol. 17, pp: 375-409.
6
Goreau, T.J., 2009. Biorock as a technical adaptation strategy for coral reef protection and restoration in the tourism industry. Global Coral Reef Alliance, USA.
7
Goreau, T.J. and Sarkisian, T., 2010. Electric Coral Reef Restoration in Thailand. Asia Pacific Coral Reef Symposium. Vol. 2, 100 p.
8
Hughes, T.P.; Baird, A.H.; Bellwood, D.R.; Card, M.; Connolly, S.R.; Folke, C.; Grosberg, R.K.; Hoegh-Guldberg, O.; Jackson, J.B.C.; Kleypas, J.A.; Lough, J.; Marshall, P.; Nystrom, M.; Palumbi, S.R.; Pandolfi, J.M.; Rosen, B. and Roughgarden, J., 2003. Climate change, human impacts, and the resilience of coral reefs. Science. Vol. 301, No. 5635, pp: 929-933.
9
Karissa, P.T.; Sukardi.; Priyono, S.B.; Mamangkey, G.F. and Taylor, J.J.U., 2012. Utilization of Low-Voltage Electricity to Stimulate Cultivation of Pearl Oysters Pinctada maxima (Jameson). In: Goreau, T.J. and Trench, R.K., Eds., Innovative Methods of Marine Ecosystem Restoration, CRC Press, Boca Raton. pp: 131-139.
10
Kudus, A.; Dan, I. and Wijaya., 2001. Transplantasi Biota Karang. Laporanke-1. Program Penelitian. IPB. Bogor. Hal. 133 p.
11
Kim, K. and Harvell, C.D., 2004. The rise and fall of a six year coral-fungal epizootic. American Naturalist. Vol. 164, No. 5, pp: 52-63.
12
Muller, E.M.; Rogers, C.S.; Spitzak, A.S. and VanWoesik, R., 2008. Bleaching increases likelihood of disease on Acropora palmata (Lamark) in Hawksnest Bay, St John, US Virgin Islands. Coral Reefs. Vol. 27, No. 1, pp: 191-195.
13
Mydlarz, L.D.; Holthouse, S.F.; Peters, E.C. and Harvell, C.D., 2008. Cellular responses in sea fan corals: Granular amoebocytes react to pathogen and climate stressors. PLoS One. Vol. 3, No. 3, pp: 1811.
14
Natasasmita, D.; Wijayanti, D.P. and Suryono, C.A., 2016. The Effects of Electrical Voltage Differences and Initial Fragment Size on Growth Performance and Survival Rate of Coral Acropora cerealis in Biorock Method. Journal of Aquaculture and Marine. Vol. 4, No. 4, pp: 86.
15
Nitzsche, J., 2012. Electricity Protects Coral from Overgrowth by an Encrusting Sponge in Indonesia. In: Goreau, T.J. and Trench, R.K., Eds., Innovative Methods of Marine Ecosystem Restoration, CRC Press, Boca Raton.
16
pp: 91-103.
17
Piazza, B.P.; Piehler, M.K.; Grossman, B.P.; La Peyre, M.K. and La Peyre, J.L., 2009. Oyster Recruitment and Growth on an Electrified Structure in Grand Isle, Louisiana. Bulletin of Marine Science. Vol. 84, pp: 59-66.
18
Rezai, H., 1995. Observation of some corals in shallow waters of several remote Iranian islands in the Persian Gulf. Abzeeyan. Vol. 7, pp: 4-11.
19
Robbe, D., 2010. Gili Biorock Project-Situation. Gili Eco Trust, Indonesia.
20
Sabater, M.G. and Yap, H.T., 2002. Growth and Survival of Coral Transplants with and without Electrochemical Deposition of CaCoB3B. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 272, pp: 131-146.
21
Sabater, M.G. and Yap, H.T., 2004. Long-Term Effects of Mineral Accretion on Growth, Survival and Corallite Properties of Porites cylindrica Dana. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 311,
22
pp: 355-374.
23
Stromberg, S.M.; Lundalv, T. and Goreau, T.J., 2010. Suitability of Mineral Accretion as a Rehabilitation Method for Cold-Water Coral Reefs. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 395, pp: 153-161.
24
Zhao, M.; Song, B.; Pu, J.; Wada, T.; Reid, B.; Tai, G.; Wang, F.; Guo, A.; Walczysko, P.; Gu, Y.; Sasaki, T.; Suzuki, A.; Forrester, J.V.; Bourne, H.R.; Devreotes, P.N.; McCaig, C.D. and Penninger, J.M., 2006. Electrical Signals Control Wound Healing through Phosphatidylinositol-3-OH Kinase-γ and PTEN. Nature. Vol. 442,
25
pp: 457-460.
26
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین خواص ضدقارچی Bacillus sp و Staphylococcus haemolyticus جدا شده از اسفنج بومی خلیج فارس
حضور تعداد زیادی از میکروارگانیسم ها، درون مزوهیل بسیاری از گونه های اسفنج به اثبات رسیده است. هدف از این تحقیق تعیین خواص ضدقارچی باکتری های همراه با اسفنج بومی خلیج فارس می باشد که تاکنون در ایران گزارشی در این مورد ارائه نشده است. برای این منظور بافت مزوهیل اسفنج Haliclonia simulanse به دست آمده از آب های ساحلی استان بوشهر در رقت های مختلف در محیط کشت های مناسب تلقیح گردید. در غربال گری اولیه 8 سویه به دست آمد که برای تعیین خواص ضدقارچی باکتری های جداشده، دو روش انتشار از دیسک و دیسک آگار علیه 3 سویه قارچی Rhizoctonia solani، Penicillium italicumو Fusarium oxysporum مورد استفاده قرار گرفت. هم چنین تعیین ترکیبات عصاره متانولی با استفاده از GC-MS انجام شد. شناسایی مولکولی سویه های شماره 4 و 7 که بالاترین خواص ضدقارچی را داشتند مشخص نمود که سویه شماره 4 بیش ترین شباهت را در حد 98% با سویه Bacillus sp. (با فاصله ژنتیکی 0/004) و سویه شماره 7 بیش ترین شباهت را در حد 95% با سویه Staphylococcus haemolyticus(با فاصله ژنتیکی 0/02) دارا می باشند. سویه های شماره 4 و 7 به ترتیب با شماره های دسترسی KY31376 و KY71394 در NCBI ثبت شدند. در روش دیسک آگار Bacillus sp. با ایجاد هاله عدم رشد به قطر 28/33 میلی متر بیش ترین تاثیر ضدقارچی را بر گونه R.solani و Staphylococcus haemolyticus با ایجاد هاله عدم رشد به قطر 27/41 میلی متر بیش ترین تاثیر ضدقارچی را بر گونه F. oxysporum نشان دادند. در روش انتشار از دیسک نیز به ترتیب عصاره های متانولی سویه های Bacillus sp. و Staphylococcus haemolyticus بیشترین تاثیر ضدقارچی را داشتند.
http://www.aejournal.ir/article_88520_c743758174b9a8f69fbac356188d0ccf.pdf
2018-12-22
559
566
شناسایی مولکولی
عصاره متانولی
مزوهیل
بوشهر
ماندانا
زارعی
zarei.mandana@yahoo.com
1
گروه زیست فناوری دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر ، ایران
LEAD_AUTHOR
مرضیه
جاهدی
jahedi_14@gmail.com
2
گروه زیست فناوری دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر ، ایران
AUTHOR
آتی، ف.، 1377. بررسی اثر چند باکتری آنتاگونیست روی قارچ Phytophthpra capsici عامل بیماری بوتهمیری فلفل. طرح تحقیقاتی دانشکده کشاورزی، دانشگاه تهران.
1
اکبری کیارودی، ل.، 1382. تاثیر باکتری های آنتاگونیست علیه عامل پوسیدگی سفید ساقه کلزا در اثر Sclerotinia sclerotiorum. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشکده علوم کشاورزی، دانشگاه گیلان. 92 صفحه.
2
سالاری، م.؛ شهیدی بنجار، غ.ح.؛ صادقی، ب،؛ پنجه، ن،؛ امینایی، م.م. و شاکری، ط.، 1389 . ارزیابی کنترل بیولوژیکی دو جدایه از اکتینومیست های ضدقارچی ایرانی برعلیه Phytophthora parasitica و P. citrophthora در شرایط آزمایشگاه و گلخانه. نشریه حفاظت گیاهان. جلد 24، شماره 4، صفحات 437 تا 444.
3
کاظمی، ش.، 1383. بررسی تأثیر باکتریهای آنتاگونیست ناحیه ریزوسفر گندم علیه قارچ Bioolaris spp عامل پوسیدگی ریشه و طوقه گندم در همدان. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشکده کشاورزی، دانشگاه بوعلی سینای همدان. 133 صفحه.
4
محسنی، م. و نوروزی، ح.، 1392. بررسی فعالیت ضدقارچی اکتینومیست های جداشده از رسوبات بستر دریای مازندران. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. جلد 23، شماره 104، صفحات 79 تا 87.
5
نجف زاده ورزی، ح.، 1386. آنتی بیوتیک ها و داروهای ضدمیکروب (مفاهیم بنیادی و کاربردهای بالینی). انتشارات تراوا. 125 صفحه.
6
Aghighi, S.; Shahidi Bonjar, G.H.; Rawashdeh, R.; Batayneh, S. and Saadoun, I., 2004. First report of antifungal spectra of activity of Iranian actinomycetes strains against Alternaria solani, Alternaria alternate, Fusarium solani, Phytophthora megasperma, Verticillium dahliae and Saccharomyces cerevisiae. Asian Journal of Plant Sciences. Vol. 3, No. 4, pp: 463-471.
7
Akpuaka, A.; Ekwenchi, M.M.; Dashak, D.A. and Dildar, A., 2013. Biological activities of characterized isolates of n-hexane extract of Azadirachta indica A. Juss (Neem) leaves. Nature and Science. Vol. 11, No. 5, pp: 141-147.
8
Balachandran, C.; Duraipandiyan, V.; Balakrishna, K. and Ignacimuthu, S., 2012. Petroleum and polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs) degradation and naphthalene metabolism in Streptomyces sp. (ERI-CPDA-1) isolated from oil contaminated soil. Bioresource technology. Vol. 112, pp: 83-90.
9
Baniasadi, F.; Bonjar, G.S.; Baghizadeh, A.; Nik, A.K.; Jorjandi, M.; Aghighi, S. and Farokhi, P.R., 2009. Biological control of Sclerotinia sclerotiorum, causal agent of sunflower head and stem rot disease, by use of soil borne actinomycetes isolates. American Journal of Agricultural and Biological Sciences. Vol. 4, No. 2, pp: 146-151.
10
Blunt, J.W.; Copp, B.R.; Munro, M.H.; Northcote, P.T. and Prinsep, M.R., 2005. Marine natural products. Natural Product Reports. Vol. 22, pp: 15-61.
11
Chelossi, E.; Pantile, R.; Pronzato, R.; Milanese, M. and Hentschel, U., 2007. Bacteria with antimicrobial properties isolated from the Mediterranean sponges Chondrilla nucula and Petrosia ficiformis. Aquatic Microbial Ecology. Vol. 49, pp: 157-163.
12
Joo, G.J., 2005. Purification and characterization of an extracellular chitinase from the antifungal biocontrol agent Streptomyces halstedii. Biotechnology letters. Vol. 27, No. 19, pp: 1483-1486.
13
Labeda, D.P.; Price, N.P.; Tan, G.Y.A.; Goodfellow, M. and Klenk, H.P., 2010. Emended description of the genus Actinokineospora Hasegawa 1988 and transfer of Amycolatopsis fastidiosa Henssen et al. 1987 as Actinokineospora fastidiosa comb. nov. International journal of systematic and evolutionary microbiology. Vol. 60, No. 6, pp: 1444-1449.
14
Li, C.W.; Chen, J.Y. and Hua, T.E., 1998. Precambrian sponges with cellular structures. Science. Vol. 279, No. 5352, pp: 879-882.
15
Maruthupandian, A. and Mohan, V.R., 2011. GC-MS analysis of some bioactive constituents of Pterocarpus marsupium Roxb. Int J Chem Tech Res. Vol. 3, No. 3, pp: 1652-1657.
16
Prapagdee, B.; Kuekulvong, C. and Mongkolsuk, S., 2008. Antifungal potential of extracellular metabolites produced by Streptomyces hygroscopicus against phytopathogenic fungi. International Journal of Biological Sciences. Vol. 4, No. 5, pp: 330-337.
17
Raczkowski, J.V., 2010. Biodiversity of actinomycetes associated with Caribbean sponges of Puerto Rico, and their metabolic profiles (Doctoral dissertation, University of North Carolina Wilmington).
18
Sambrook, J.; Russell, D. and Russell, D.W., 2001. Molecular Cloning: A Laboratory manual. (3 - Volume set). Vol. 999-2001: Cold spring harbor laboratory press, New York.
19
Seyed- Asli, N.; Zamani, M.R,; Motallebi, M. and Harighi M.J., 2005. Study of chitinase enzyme production in the Trichoderma fungus. Iranian journal of biology. Vol. 17, pp: 227-233.
20
Shick, J.M. and Dunlap, W.C., 2002. Mycosporine-like amino acids and related gadusols: biosynthesis, accumulation, and UV-protective functions in aquatic organisms. Annual review of Physiology. Vol. 64, No. 1, pp: 223-262.
21
Toth M, E.; Kerine Borsodi, A.; Felfoldi, T.; Vajna, B.; Sipos, R. and Marialigeti, K., 2013. Practical Microbiology: based on the Hungarian practical notes entitled" Mikrobiologiai Laboratoriumi Gyakorlatok". A. Nafradi Editor.
22
Wang, C.M. and Cane, D.E., 2008. Biochemistry and molecular genetics of the biosynthesis of the earthy odorant methylisoborneol in Streptomyces coelicolor. Journal of the American Chemical Society. Vol. 130, No. 28, pp: 8908-8909.
23
Webster, N.S. and Hill, R.T., 2001. The culturable microbial community of the Great Barrier Reef sponge Rhopaloeides odorabile is dominated by a α-Proteo bacterium. Marine Biology. Vol. 138, No. 4, pp: 843-851.
24
Zhao, G.Z.; Li, J.; Qin, S.; Zhang, Y.Q.; Zhu, W.Y.; Jiang, C.L.; Xu, L.H. and Li, W.J., 2009. Micrococcus yunnanensis sp. nov., a novel actinobacterium isolated from surface-sterilized Polyspora axillaris roots. International journal of systematic and evolutionary microbiology. Vol. 59, No. 10, pp: 2383-2387.
25
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی مقاومت فلوروکینولونی وابسته به فعالیت پمپ افلاکس Mex-oprM در سویه های مقاوم چندگانه دارویی سودوموناس ائروجینوزا با استفاده از ممانعت گر کربونیل سیانید m-کلروفنیل هیدرازون (CCCP)
از مشکلات مهم عفونتهای بیمارستانی مرتبط با سودوموناس ائروجینوزا مقاومت چند دارویی است. پمپهای تراوشی باکتری قادر هستند طیف وسیعی از آنتیبیوتیکها و دترجنتها را به خارج از سلول تراوش کنند. هدف از مطالعه حاضر بررسی فعالیت پمپ افلاکس در سویههای مقاوم چندگانه دارویی سودوموناس آٌئروجینوزا مقاوم به فلوروکینولونها است. مطالعه بر روی50 ایزوله سودوموناس آئروجینوزا جدا شده از نمونههای بالینی بیماران مراجعهکننده به بیمارستان میلاد تهران انجام گرفت. پس از شناسایی جدایهها با انجام آزمونهای بیوشیمایی، حساسیت آنتیبیوتیکی با روش انتشار در دیسک و طبق استاندارد CLSI2017تعیین شد. پس از تعیین سویههای مقاوم چند دارو، کمترین غلضت مهارکنندگی رشد آنتیبیوتیکهای سیپروفلوکساسین و لووفلوکساسین تعیین شد و با استفاده از کربونیل سیانید m-کلروفیل هیدرازون (CCCP) فعالیت پمپ افلاکس جدایهها مورد بررسی قرار گرفت.34% سویه MDR سودوموناس آئروجینوزا که به بیش از دو کلاس آنتیبیوتیکی مقاوم بودند، شناسایی شدند. با روش ممانعتگر CCCP برای سویههای MDR، 2سویه برای آنتیبیوتیک سیپروفلوکساسین و 3سویه برای آنتیبیوتیک لووفلوکساسین کاهش 4 برابری و یا بیش از 4برابر MIC پس از تاثیر ممانعتگر CCCP داشتهاند. فراوانی سویه های MDRسودوموناس آئروجینوزا مورد مطالعه پایین است. تنها 4 ایزوله از بین سویههای MDR فعالیت پمپ افلاکس داشتند. بنابراین پمپ افلاکس مکانیسم اصلی برای مقاومت به سیپروفلوکساسین ولووفلوکساسین در بین این ایزولهها نیست و برای مطالعات بعدی بررسی سایر مکانیسمهای مقاومت فلورو کینولونی توصیه میشود.
http://www.aejournal.ir/article_82458_e7bc5ebb5d18d413767bfab92b26f778.pdf
2018-12-22
567
574
پمپ افلاکس
سودوموناس آئروجینوزا
مقاوم چندگانه دارویی
CCCP
مهیا
شهرابی
mahya2110@yahoo.com
1
گروه میکروبیولوژی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
AUTHOR
سحر
هنرمند
sahar_hj2@yahoo.com
2
گروه میکروبیولوژی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
LEAD_AUTHOR
روزبه
یلفانی
ryalfani@yahoo.com
3
گروه پرستاری، دانشکده پزشکی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
AUTHOR
Abdi-Ali, A.; Mohammadi-Mehr, M. and Alaei, Y.A., 2006. Bactericidal activity of various antibiotics against biofilm-producing Pseudomonas aeruginosa. International Journal of Antimicrobial Agents. Vol. 27, pp:196-200.
1
Adabi, M.; Talebi-Taher, M.; Arbabi, L.; fshar, M.; Fathizadeh, A.S.; Minaeian, S.; Moghadam-Maragheh, N. and Majidpour, A., 2015. Spread of efflux pump overexpressing-mediated fluoroquinolone resistance and multidrug resistance in Pseudomonas aeruginosa by using an efflux pump inhibitor. Infection and chemotherapy. Vol. 47, pp:98-104.
2
Akram, M., M. Shahid, and A. U. Khan. 2007. Etiology and antibiotic resistance patterns of community-acquired urinary tract infections in JNMC Hospital Aligarh, India. Annals of clinical microbiology and antimicrobials 6:4.
3
Ali, I.; Kumar, N.; Ahmed, S. and Dasti, J.I., 2014. Antibiotic resistance in uropathogenic E. coli strains isolated from non-hospitalized patients in Pakistan. Journal of clinical and diagnostic research: JCDR 8:DC01.
4
Amaral, L. and Fanning, S., 2011. An original deal for new molecule: reversal of efflux pump activity, a rational strategy to combat gram-negative resistant bacteria. Current medicinal chemistry. Vol. 18, pp: 2969-2980.
5
Arvanitidou, M.; Katikaridou, E.; Douboyas, J. and Tsakris, A., 2005. Prognostic factors for nosocomial bacteraemia outcome: a prospective study in a Greek teaching hospital. Journal of Hospital Infection. Vol. 61, pp:219-224.
6
Chanawong, A.; M'zali, F.; Heritage, H.J.; Lulitanond, A. and Hawkey, P.M., 2001. SHV-12, SHV-5, SHV-2a and VEB-1 extended-spectrum β-lactamases in Gram-negative bacteria isolated in a university hospital in Thailand. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. Vol. 48, pp:839-852.
7
Farshad, S.; Ranjbar, R.; Japoni, A.; Hosseini, M.; Anvarinejad, M. and Mohammadzadegan, R., 2012. Microbial Susceptibility, Virulance Factor, and Plasmid profiles of Uropathogenic E. Coli Strains Isolated from Children in Jahrom Arch Iran Med. Vol. 15,5 p.
8
Jefferies, J.; Cooper, T.; Yam, T. and Clarke, S., 2012. Pseudomonas aeruginosa outbreaks in the neonatal intensive care unit a systematic review of risk factors and environmental sources. Journal of medical microbiology. Vol. 61, pp: 1052-1061.
9
Kishk, R.; Mandour, M.; Hessam, W. and Nemr, N., 2014. Efflux pump genes and chlorhexidine resistance: Clue for Klebsiella pneumoniae infections in intensive care units, Egypt. African Journal of Microbiology Research. Vol. 8, pp: 2162-2167.
10
Kristiansen, J.E. and Amaral, L., 1997. The potential management of resistant infections with non-antibiotics. The Journal of antimicrobial chemotherapy. Vol. 40, pp: 319-327.
11
Kumar, A. and Schweizer, H.P., 2005. Bacterial resistance to antibiotics: active efflux and reduced uptake. Advanced drug delivery reviews. Vol. 57, pp: 1486-1513.
12
Lomovskaya, O.; Lee, A.; Hoshino, K.; Ishida, H.; Mistry, A.; Warren, M.S.; Boyer, E.; Chamberland, S. and Lee, V.J., 1999. Use of a genetic approach to evaluate the consequences of inhibition of efflux pumps in Pseudomonas aeruginosa. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. Vol. 43, pp: 1340-1346.
13
Mahamoud, A.; Chevalier, J.; Alibert-Franco, S.; Kern, W.V. and Pagès, J.M., 2007. Antibiotic efflux pumps in Gram-negative bacteria: the inhibitor response strategy. Journal of Antimicrobial Chemotherapy. Vol. 59,
14
pp:1223-1229.
15
Nehme, D. and Poole, K., 2007. Assembly of the MexAB-OprM multidrug pump of Pseudomonas aeruginosa: component interactions defined by the study of pump mutant suppressors. Journal of bacteriology. Vol. 189,
16
pp: 6118-6127.
17
Nikasa, P.; Abdi-Ali, A.; Rahmani-Badi, A. and Al-Hamad, A., 2013. In vitro Evaluation of Proton Motive Force-Dependent Efflux Pumps Among Multidrug Resistant Acinetobacter baumannii Isolated From Patients at Tehran Hospitals. Jundishapur Journal of Microbiology. Vol.6.
18
Pakzad, I.; Karin, M.Z.; Taherikalani, M.; Boustanshenas, M. and Lari, A.R., 2013. Contribution of AcrAB efflux pump to ciprofloxacin resistance in Klebsiella pneumoniae isolated from burn patients. GMS hygiene and infection control. Vol. 8.
19
Piddock, L.J., 2006. Clinically relevant chromosomally encoded multidrug resistance efflux pumps in bacteria. Clinical microbiology reviews. Vol. 19, pp:382-402.
20
Poole, K., 2000. Efflux-mediated resistance to fluoroquinolones in gram-negative bacteria. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. Vol. 44, pp:2233-2241.
21
Pourmand, M.R.; Yousefi, M.; Salami, S.A. and Amini, M., 2014. Evaluation of expression of NorA efflux pump in ciprofloxacin resistant Staphylococcus aureus against hexahydroquinoline derivative by Real-Time PCR. Acta Medica Iranica. Vol. 52, 424 p.
22
Quinn, P.J.; Markey, B.K.; Leonard, F.C.; Hartigan, P.; Fanning, S. and Fitz Patrick, E., 2011. Veterinary microbiology and microbial disease. John Wiley & Sons.
23
Rana, T.; Kaur, N.; Farooq, U.; Khan, A. and Sngh, S., 2015. Efflux as an arising cause of drug resistance in Punjab-India. IJBPAS. Vol. 4, pp: 5967-5979.
24
Ren, Q. and Paulsen, I.T., 2005. Comparative analyses of fundamental differences in membrane transport capabilities in prokaryotes and eukaryotes. PLoS Computational Biology. Vol. 1, 27 p.
25
Rodrigues, P.M.D.A.; Neto, C.; Santos, L.R.D.C. and Knibel, M.F., 2009. Ventilator-associated pneumonia: epidemiology and impact on the clinical evolution of ICU patients. Jornal brasileiro de pneumologia. Vol. 35,
26
pp: 1084-1091.
27
Saderi, H.; Lotfalipour, H.; Owlia, P. and Salimi, H., 2010. Detection of metallo-β-lactamase producing Pseudomonas aeruginosa isolated from burn patients in Tehran, Iran. Laboratory Medicine. Vol. 41, pp: 609-612.
28
Saier Jr, M.H. and Paulsen, I.T., 2001. Presented at the Seminars in cell & developmental biology.
29
Sotto, A.; De Boever, C.M.; Fabbro-Peray, P.; Gouby, A.; Sirot, D. and Jourdan, J., 2001. Risk Factors for Antibiotic-ResistantEscherichia coli Isolated from Hospitalized Patients with Urinary Tract Infections: a Prospective Study. Journal of clinical microbiology. Vol. 39, pp:438-444.
30
Tajbakhsh, E.; Ahmadi, P.; Abedpour-Dehkordi, E.; Arbab-Soleimani, N. and Khamesipour, F., 2016. Biofilm formation, antimicrobial susceptibility, serogroups and virulence genes of uropathogenic E. coli isolated from clinical samples in Iran. Antimicrobial Resistance and Infection Control. Vol. 5, 11 p.
31
Tenover, F.C., 2006. Mechanisms of antimicrobial resistance in bacteria. The American journal of medicine. Vol. 119, pp:3-10.
32
Van Bambeke, F.; Balzi, E. and Tulkens, P.M., 2000. Antibiotic efflux pumps. Biochemical pharmacology. Vol. 60, pp: 457-470.
33
Viveiros, M.; Martins, A.; Paixão, L.; Rodrigues, L.; Martins, M.; Couto, I.; Fähnrich, E.; Kern, W.V. and Amaral, L., 2008. Demonstration of intrinsic efflux activity of Escherichia coli K-12 AG100 by an automated ethidium bromide method. International Journal of Antimicrobial Agents. Vol. 31, pp:458-462.
34
Wang, H.; Dzink-Fox, J.L.; Chen, M. and Levy, S.B., 2001. Genetic characterization of highly fluoroquinolone-resistant clinical Escherichia coli strains from China: role ofacrR mutations. Antimicrobial agents and chemotherapy. Vol. 45, pp: 1515-1521.
35
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی وجود ژن های پمپ افلاکس AdeABC در ایزوله های بالینی اسینتوباکتر بامانی با مقاومت چندگانه دارویی
اسینتوباکتر بومانی به دلیل پتانسیل بالا در کسب عوامل مقاومت به دامنه وسیعی از آنتی بیوتیک ها، یکی از اصلی ترین باکتری های با مقاومت چندگانه دارویی است.مکانیسم های مختلفی برای بروز مقاومت چندگانه دارویی در اسینتوباکتر بومانی وجود دارد که شامل پمپ های تراوشی یا افلاکس، بتالاکتاماز، اینتگرون ها، عناصر افزایشی و پروتئین های ساختاری می باشند. هدف از این مطالعه تعیین فراوانی ژن های پمپ افلاکس در ایزوله های بالینی اسینتوباکتر بومانی با مقاومت چندگانه دارویی می باشد. 79 سویه اسینتوباکتر بومانی از نمونه های بالینی بیماران مراجعه کننده به بیمارستان قلب تهران جدا شده و با آزمون های بیوشیمیایی تشخیص داده شدند. حساسیت آنتی بیوتیکی ایزوله ها با روش انتشار دیسک براساس استاندارد 2015CLSI تعیین شد. سپس استخراجDNA انجام شد و حضور ژن های adeA، adeB وadeC با استفاده از PCR بررسی شد. میزان مقاومت نسبت به آنتی بیوتیک های آمی کاسین، سفتازیدیم، سیپروفلوکسازین، مروپنم، ایمی پنم، تتراسایکین و تری متوپریم به ترتیب 83/75، 86/25، 82/5، 56/25، 91/25، 58/75، 93/75 درصد بود. فراوانی ژن های adeA، adeB 96/2% و فراوانی adeC 91/1% گزارش شد. ارتباط معنیداری بین مقاومت به ایمی پنم، مروپنم با فراوانی ژن ها وجود داشت. با توجه به شیوع بالای ژن های پمپ افلاکس AdeABC ممکن است این امر یک نقش مهم در مقاومت ایزوله های بالینی اسینتوباکتر بومانی به ویژه مقاومت به ایمی پنم، مروپنم و تری متوپریم ایفا کند. اگرچه باید به نقش بیان ژن های پمپ افلاکس در بروز مقاومت آنتی بیوتیکی توجه کرد.
http://www.aejournal.ir/article_88525_cb3053dc05fb42a4bf31969b2808a1cd.pdf
2018-12-22
575
580
اسینتوباکتر بامانی
پمپ افلاکس
ژن های adeABC
مقاومت آنتی بیوتیک
شاهین
زایری
shaahin.patrios@gmail.com
1
گروه میکروبیولوژی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
فاطمه
نوربخش
niloofar_noorbakhsh@yahoo.com
2
گروه میکروبیولوژی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
LEAD_AUTHOR
فهیمه
باغبانی آرانی
baghbani.f@gmail.com
3
گروه ژنتیک، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
Ambudkar, S.V.; Dey, S.; Hrycyna, C.A.; Ramachandra, M.; Pastan, I. and Gottesman, M.M., 1999. Biochemical, cellular, and pharmacological aspects of the multidrug transporter 1. Annual review of pharmacogical and toxicology. Vol. 39, No. 1, pp: 361-398.
1
Babapour, E.; Haddadi, A.; Mirnejad, R.; Angaji, S.A. and Amirmozafari, N., 2017. Study of drug resistance and ompA gene existence in clinical Acinetobacter baumannii isolates. IJMM. Vol. 11, No. 1, pp: 30-38.
2
Chopra, I. and Roberts, M., 2001. Tetracycline antibiotics: mod of action, applications, moleculr biology, and epidemiology of bacterial resistance. Microbiology and molecular biology Reviews. Vol. 65, No. 2, pp: 232-260.
3
Coyne, S.; Rosenfeld, N. and Lambert, T., 2010. Overexpression of resistance-nodulation-cell division pump AdeFGH confers multidrug resistance in Acinetobacter baumannii. Antimicrobial agents and chemotherapy. Vol. 54, pp: 4389-4393.
4
García-Garmendia, J.L.; Ortiz-Leyba, C.; Garnacho Montero, J.; Jiménez-Jiménez, F.J.; Monterrubio-Villar, J. and Gili-Miner, M., 1999. Mortality and the increase in length of stay attributable to the acquisition of Acinetobacter in critically ill patients. Crit Care Med. Vol. 27, No. 9, pp: 1794-1799.
5
Hartzell, J.D.1.; Kim, A.S.; Kortepeter, M.G. and Moran, K.A., 2007. Acinetobacter Pneumonia: A Review. MedGenMed. Vol. 9, pp: 1-6.
6
Hujer, K.; Hujer, A.; Hulten, E.; Bajaksouzian, S.; Adams, J. and Donskey, C., 2006. Analysis of Antibiotic Resistance Genes in Multidrug-Resistant Acinetobacter sp. Isolates from Military and Civilian Patients treated at the Walter Reed Army Medical Center. Antimicrob Agents Chemother. Vol. 50, No. 12, pp: 4114-4123.
7
Japoni Nejad, A.; Ghaznavi Raad, A. and Soofian, M., 2014. Molecular detection of AdeABC efflux pump genes in clinical isolates of acinetobacter baumannii and their contribution in imipenem resistance. Tebe Jonoob. Vol. 5, pp: 815-823. [In Persian]
8
Jassim, K.; Ghaima, K. and Saadedin, M., 2016. AdeABC efflux pump gene in multidrug resistant Acinetobacter baumanii isolates. Avecina Journal of clinica microbiology and Infection. Vol. 3, No. 4, pp: 131-146.
9
Karlowsky, J. A.; Draghi, D.C.; Jones, M.C.; Thornsberry, C.; Friedland, I.R. and Sahm, D.F., 2003. Surveillance for Antimicrobial Susceptibility among Clinical Isolates of Pseudomonas aeruginosa and Acinetobacter baumannii from Hospitalized Patients in the United States, 1998 to 2001.Antimicrob Agents Chemother. Vol. 47, pp: 1681-1688.
10
Katsaragakis, S.; Markogiannakis, H.; Toutouzas, K.; Drimousis, P.; Larentzakis, A. and Theodoraki, E.M., 2008. Acinetobacter baumannii infections in a surgical intensive care unit: predictors of multi-drug resistance. World J Surg. Vol. 6, pp: 1194-1202.
11
Khalat abadi, R.; Moniri, R.; Shajari, G.; Nazem, H.; Mosavi, A. and Ghasemi, A., 2008. Antibiotic resistance pattern and release of antibiotic resistance genes in Acinetobacter species isolated from Shahid Beheshti Hospital in Kashan. Feyz. Vol. 4, pp: 60-66. [In Persian]
12
Khosrishahi, N. and Sharifi, M., 2007. Isolation of carbapenem resistant Acinetobacter baumannii(CRAB) strains from patients and equipments of Intensive care units (ICUs) at Qazvin between 2005-2006. Iran J Med Microbiol. Vol. 1, No. 3, pp: 33-38. [In Persian]
13
Lee, S.O.; Kim, N.J.; Choi, S.H.; Hyong, K.T.; Chung, J.W. and Woo, J.H., 2004. Risk factors for acquisition of imipenem-resistant Acinetobacter baumannii: a case-control study. Antimicrob Agents Chemother. Vol. 48, No. 1, pp: 224-228. [PubMed: 14693543]
14
Lin, F.; Xu, Y.; Chang, Y.; Liu, C.; Jia, X. and Ling, B., 2017. Molecular Characterization of Reduced Susceptibility to Biocides in Clinical Isolates of Acinetobacter baumannii. Front Microbiol. Vol. 8. published online.
15
Lubelski, J.; Konings, W.N. and Driessen, A.J., 2007. Distribution and physiology of ABC-type transporters contributing to multidrug resistance in bacteria. Microbiology Mol Biol. Vol. 71, pp: 463-476.
16
Maraki, S.; Mantadakis, E.; Mavromanolaki, V.; Kofteridis, D. and Samonis, G.A., 2016. 5-year Surveillance Study on Antimicrobial Resistance of Acinetobacter baumannii Clinical Isolates from a Tertiary Greek Hospital. Infect Chemother. Vol. 48, No. 3, pp: 190-198.
17
Murray, P.R. and Baron, E.J., 2010. Murray Medical Microbiology. 7th ed.
18
Nikaido, H., 1994. Prevention of drug access to bacterial targets: Permeability barriers and active efflux. Science. Vol. 264, pp: 382-388.
19
Normohamady, Z.; Zamanzad, B.; Shavarzi, A. and Kiani, P., 2015. Evaluation antimicrobial resistance of Acinetobacter baumannii isolated from Shahrekord teaching hospitals in 2013. J Shahrekord Univ Med Sci. Vol. 16, No. 6, pp: 1-8
20
Peymani, A.; Higgins, P.G.; Nahaei, M.R.; Farajnia, S. and Seifert, H., 2012. Characterisation and clonal dissemination of OXA-23-producing Acinetobacter baumannii in Tabriz, northwest Iran. Int J Antimicrob Agents. Vol. 39, pp: 526-528.
21
Pulsen, I.T. and Lewis, K., 2001. Microbial Multidrug efflux: introduction. Journal of molecular Microbiology an Biotecnology. Vol. 3, No. 2, pp: 143-144.
22
Su, C.H.1.; Wang, J.T.; Hsiung, C.A.; Chien, L.J.; Chi, C.L. and Yu, H.T., 2012. Increase of Carbapenem-Resistant Acinetobacter baumannii Infection in Acute Care Hospitals in Taiwan: Association with Hospital Antimicrobial Usage. plose one. Vol. 5, pp: 1-6.
23
Sugawara, E.1. and Nikaido, H., 2014. Properties of AdeABC and AdeIJK efflux systems of Acinetobacter baumannii compared with those of the AcrAB-TolC system of Escherichia coli. Antimicrob Agents Chemother. Vol. 58, No. 12, pp: 7250-7257.
24
Taherikalani, M.; Etemadi, G.; Geliani, K.N.; Fatollahzadeh, B.; Soroush, S. and Feizabadi, M.M., 2008. Emergence of multi and pandrug resistance Acinetobacter baumannii carrying blaOXA-type-carbapenemase genes among burn patients in Tehran, Iran. Sudi Med J. Vol. 29, No. 4, pp: 623-624.
25
Vila, J.1.; Mart, S. and Snchez-Céspedes, J., 2007. Porins, efflux pumps and multidrug resistance in Acinetobacter baumannii. oxford academi. Vol. 59, pp: 1210-1215.
26
Wieczorek, P.1.; Sacha, P.; Hauschild, T.; Zórawski, M.; Krawczyk, M. and Tryniszewska, E., 2008. Multidrug resistant Acinetobacter baumannii--the role of AdeABC (RND family) efflux pump in resistance to antibiotics. Folia Histochem Cytobiol. Vol. 46, No. 3, pp: 257-267.
27
Xiao, S.Z.1.; Chu, H.Q.; Han, L.Z.1.; Zhang, Z.M.; Li, B.; Zhao, L. and Xu, L., 2016. Resistant mechanisms and molecular epidemiology of imipenem-resistant Acinetobacter baumannii. Mol Med Rep. Vol. 14, No. 3, pp: 2483-24888.
28
ORIGINAL_ARTICLE
تولیدمثل گوزن قرمز خزری (Cervus elaphus maral) در پناهگاه حیات وحش سمسکنده، ساری
گوزن قرمز خزری یا مارال (Cervus elaphus maral) نشخوارکنندهای از خانواده گوزن سانان است. نگه داری و حفاظت از مارال نیازمند شناخت خصوصیات رفتاری، فیزیولوژی، محیط و عوامل آسیب رسان به این گونه می باشد. در این مقاله صفات و رفتارشناسی تولیدمثلی این گونه در هر دو جنس نر و ماده بر اساس مشاهدات و ثبت اطلاعات گوزن های نگه داری شده در پناهگاه حیات وحش سمسکنده ساری در بازه زمانی 1385 تا 1390 ارائه شده است. خصوصیات گوزن نر شامل رفتار جنسی، تغییرات ظاهری در فصل تولیدمثل و فیزیولوژی تولیدمثل و خصوصیات گوزن ماده شامل تخمک گذاری، چرخه تولیدمثلی، جفت گیری، آبستنی و زایمان مورد بررسی قرار گرفته است. شناخت خصوصیات تولیدمثلی مارال در پناهگاه حیات وحش سمسکنده ساری یکی از نیازهای اطلاعاتی مهم برای حفظ و تزاید نسل این گونه می باشد و مسیرهای جدیدی برای انجام روش های جدید در تولیدمثل این گونه در پارک های حیات وحش ایران و یا مناطق حفاظت شده دیگر را خواهد گشود.
http://www.aejournal.ir/article_88527_7268b13b5997962801427a0c86adc803.pdf
2018-12-22
581
584
گوزن قرمز خزری
تولیدمثل
رفتارشناسی
فیزیولوژی
ایران
بهرنگ
اکرامی
drekrami@iauc.ac.ir
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد چالوس، دانشگاه آزاد اسلامی چالوس، ایران
LEAD_AUTHOR
Adam, C.L.; Moir, C.E. and Atkinson, T., 1986. Induction of early breeding in red deer (Cervus elaphus) by melatonin. Journal of Reproduction and Fertility. Vol. 76, No. 2, pp: 569-573.
1
Audigé, L.; Wilson, P.R. and Morris, R.S., 1999. Reproductive performance of farmed red deer (Cervus elaphus) in New Zealand. IV. Biological markers as risk factors for yearling and adult hind conception. Animal Reproduction Science. Vol. 55, No. 3-4, pp: 239-254.
2
Ekrami, B. and Tamadon, A., 2013. Reproduction characteristics of Persian fallow deer (Dama dama mesopotamica) in Wildlife Refuge of Dasht-e-Naz, Sari. Journal of Environment. Vol. 15, pp: 13-18.
3
Ghasemzadeh-Nava, H.; Ekrami, B.; Moghadas, D. and Tamadon, A., 2012. Control of red deer (Cervus elaphus) stag domination in rut season by estrus synchronization. Iranian Journal of Veterinary Medicine. Vol. 6, No. 3, pp: 155-158.
4
Griffiths, W.M.; Stevens, D.R.; Archer, J.A.; Asher, G.W. and Littlejohn, R.P., 2010. Evaluation of management variables to advance conception and calving date of red deer (Cervus elaphus) in New Zealand venison production systems. Animal Reproduction Science. Vol. 118, No. 2-4, pp: 279-296.
5
Guinness, F.E.; Albon, S.D. and Clutton-Brock, T.H., 1978. Factors affecting reproduction in red deer (Cervus elaphus) hinds on Rhum. Journal of Reproduction and Fertility. Vol. 54, No. 2, pp: 325-334.
6
Scott, I.C.; Asher, G.W.; Archer, J.A. and Littlejohn, R.P., 2008. The effect of conception date on gestation length of red deer (Cervus elaphus). Animal Reproduction Science. Vol. 109, No. 1-4, pp: 206-217.
7
Wilson, P.R.; Walker, I.H.; Bond, D.B.; Middleberg, A. and Staples, L.D., 1991. Field evaluation of melatonin implants to advance the breeding season in 1-year-old farmed red deer hinds. New Zealand Veterinary Journal. Vol. 39, No. 1, pp: 23-28.
8