ORIGINAL_ARTICLE
تعیین گذرگاه احتمالی پلنگ ایرانی (Pantera pardus saxicolor) بین دو زیستگاه پناهگاه حیات وحش خوش ییلاق و پارک ملی گلستان با استفاده از تئوری جریان الکتریکی مدار
مدلسازی ارتباطات بوم شناختی در بین زیستگاهها و کاربرد این مدلها در برنامهریزی حفاظت، کمینمودن اثر الگوهای مکانی سیما سرزمین بر درجه ارتباطات زیستگاهی ضرورت دارد. این مطالعه با هدف تعیین گذرگاه احتمالی پلنگ ایرانی (Pantera pardus saxicolor) دردو زیستگاه پارک ملی گلستان و پناهگاه حیات وحش خوش ییلاق انجام شده است، این دو زیستگاه از بارزترین زیستگاه های پلنگ بوده که در جوار همدیگر قرار دارند. ابتدا مطلوبیت زیستگاه پلنگ ایرانی در دو زیستگاه با روش تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی مورد بررسی قرار گرفت. لایه های اطلاعاتی به کار بردهشده به عنوان متغیرهای مؤثر برحضور گونه شامل ارتفاع، شیب، شاخص پوشش گیاهی (NDVI)، فاصله از جاده ها، روستاها، چشمه ها و رودخانه ها بوده است. هم چنین از تئوری مدارهای الکتریکی برای بررسی ارتباطات زیستگاهی پلنگ ایرانی بین دو زیستگاه مذکور استفاده شد. یافته های حاصل از پژوهش نشان داد که مهم ترین عامل در انتخاب مسیر و جابه جایی پلنگ ایرانی یافتن مسیرهایی است که دارای امنیت کافی بوده و با مناطق مسکونی تداخلی نداشته باشد. به طورکلی چهار مسیر متفاوت برای جابه جایی پلنگ ایرانی شناسایی شد، که مهم ترین آن ها گذر پلنگ از قسمت جنوبی پارک در امتداد منطقه حفاظت شده لووه است. جایی که دارای پوشش مناسبی از جنگل بوده و به احتمال زیاد دارای طعمه کافی نیز می باشد،از سوی دیگر مهم ترین مسیر حرکت پلنگ در زیستگاه خوش ییلاق در شمال این منطقه قرار دارد در این جا دو مسیر با فاصله نسبتاً کمی از همدیگر مشخص شده است، که دارای تعداد کمی روستا و مناطق مسکونی است و همین امر مهم ترین عامل در انتخاب مسیر حرکت و جابه جایی پلنگ است. براساس نقشه های مطلوبیت زیستگاه و نقشه مقاومت، نقشه جریان برای گونه هدف و هم چنین نواحی مهم ارتباطی در منطقه مورد مطالعه شناسایی گردید.
http://www.aejournal.ir/article_88659_70b12ea537230a0f05fb8d56a89bc64f.pdf
2019-04-21
1
12
تئوری مدار الکتریکی
پلنگ ایرانی (Pantera pardus saxicolor)
آشیان بوم شناختی
اختلاف پتانسیل
جریان
حیدر
روحی
haydarrouhi@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
هادی
تحسینی
haditahsini@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه کردستان، سنندج، ایران
LEAD_AUTHOR
عبدالرسول
سلمان ماهینی
mahini@gau.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
حمیدرضا
رضایی
rezaei@gau.ac.ir
4
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
سلمان ماهینی، ع. و کامیاب، ح.ر.، 1388. سنجش از دور و سامانه های اطلاعات جغرافیایی کاربردی با نرم افزار ایدریسی. انتشارات مهر مهدیس. تهران. 582 صفحه.
1
ضیایی، ه.، 1387. راهنمایی صحرایی پستانداران ایران. انتشارات کانون آشنایی با حیات وحش. 350 صفحه.
2
فاخران اصفهانی، س.، 1387. بررسی امکان ایجاد کریدورهای زیستگاهی علف خواران بزرگ بین پناهگاه های حیات وحش موته و قمیشلو. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده منابع طبیعی دانشگاه تهران. 120 صفحه.
3
قدوسی، ا.؛ عشایری، د.؛ مشیری، ح.؛ قدیریان، ط.؛ خالقی حمیدی، ا.؛ قشقایی، ع.؛ حمزه پور، م.؛ ظهرابی،ح.؛ جولایی، ل. و خوروزیان، ا.، 1387. پروژه پلنگ ایرانی، گزارش سالانه 1386 الی 1387. انجمن طرح سرزمین. تهران. صفحات 214 تا 251.
4
مجنونیان، ه.؛ زاهد، ب.؛ کیابی، ب.؛ فرهنگ دره شوری، ب. و گشتاسب میگونی، ح.، 1378. پارک ملی گلستان (ذخیره گاه زیست کره). سازمان حفاظت محیط زیست. تهران. 129 صفحه.
5
ملکوتی خواه، ش.، 1392. استفاده از تئوری مدارهای الکتریکی جهت شناسایی کریدورهای مهاجرتی بین پناهگاه های حیات وحش موته و قمشلو در استان اصفهان. مجله اکولوژی کاربردی. سال 2، شماره 5، صفحات 23 تا 34.
6
ملکی نجف آبادی، س.؛ همامی، م.ر.؛ ماهینی، ع. و راهداری، و.، 1389. استفاده از سامانه های اطلاعات جغرافیایی جهت مدیریت زیستگاه حیات وحش: مطالعه موردی قوچ و میش اصفهانی (Ovis orientalis isfahanica) در پناهگاه حیات وحش موته. همایش ملی ژئوماتیک.
7
Adriaensen, F.; Chardon, J.P.; De Blust, G.; Swinnen, E.; Villalba, S.; Gulinck, H. and Matthysen, E., 2003 The application of ‘least-cost’ modelling as a functional landscape model. Landscape and Urban Planning. Vol. 64, pp: 233-247.
8
Beier, P. and Noss, R.F., 1998. Do habitat corridors provide connecti vity? Conservation Biology. Vol. 12, No. 6, pp: 1241-1252.
9
Bunn, A.G.; Urban, D.L. and Keitt, T.H., 2000. Landscape connectivity: A conservation application of graph theory. Journal of Environmental Management, Vol. 59. pp: 265-278.
10
Corlatti, L.; Hacklander, K. and Frey‐Rous, F., 2009. Ability of wildlife overpasses to provide connectivity and prevent genetic isolation. Conservation Biology.
11
Crooks, K.R., 2002. Relative sensitivities of mammalian carnivores to habitat fragmentation. Journal of conservation biodiversity. Vol. 16, No. 2, pp: 488-502.
12
Crooks, K.R. and Sanjayan, M., 2006. Connectivity Conservation. Cambridge University Press, Cambridge, UK. 732 p.
13
Darvish Sefat, A., 2006. Atlas of protected areas of Iran. Department of the Environment, Iran. 157 p.
14
Estrada, E. and Bodin, O., 2008. Using network centrality measures to manage landscape connectivity. Ecological Applications. Vol. 18, pp: 1810-1825.
15
Galparsoro, I.; Borja, A.; Bald, J.; Liria, P. and Chust, G., 2009. Predicting sustainable habitat for the European lobster (Homarus gammarus), on the basque continental shelf (Bay of Biscay), using ecological-niche factor analysis. Ecological Modeling. Vol. 220, pp: 550-567.
16
Gibson, L.A.; Wilson, B.A.; Cahill, D.M. and Hill, J., 2003. Modeling habitat suitability of the Swamp Antechinus. Biological Conservation Vol. 117, No. 2, pp: 143-150.
17
Hansen, A.J. and Defries, R., 2007. Ecological mechanisms linking protected areas to surrounding lands. Journal of Ecological Applications. Vol. 17, pp: 974-988.
18
Hirzel, A.H.; Hausser, J. and Perrin, N., 2007. Biomapper 4.0, Laboratory for Conservation Biology, Department of Ecology and Evolution, University of Lausanne, Switzerland. URL, Viewed 10 November 2010. http://www2.unil.ch/ biomapper.
19
Hirzel, A.H., 2001. When GIS come to life. Linking landscape- and population ecology for large population man agement modelling: the case of Ibex (Capra ibex) in Switzerland. PhD Thesis. Faculté des Sciences de L’ Université de Lausanne. 114 p.
20
Huntera, L.; Balme, G.; Walker, C.; Pretorius, K. and Rosenberg, K., 2003. The landscape ecology of leopards (Panthera pardus) in northern KwaZula-natal, South Africa: A preliminary project report. Ecological journal. pp: 88-94.
21
McRae, B.H.; Dickson, B.; Keitt, T.H. and Shah, V., 2008. Using circuit theory to model connectivity in ecology, evolution and conservation. Journal of Ecology. Vol.89, No. 10, pp: 2712-2724.
22
McRae, B.H., 2006. Isolation by resistance. Journal of Evolution. Vol. 60, pp: 1551-1561.
23
McRae, B.H. and Beier, P., 2007. Circuit theory predicts gene flow in plant and animal populations. Journal of Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. Vol. 104, pp: 19885-19890.
24
McRae, B.H. and Shah, V.B., 2011. Circuitscape User Guide. The University of California, Santa Barbra.
25
McRae, B.H.; Dickson, B.; Keitt, T.H. and Shah, V., 2008. Using circuit theory to model connectivity in ecology, evolution and conservation. Journal of Ecology. Vol. 89, No. 10, pp: 2712-2724.
26
Mertzanis, G.; Korakis, G.; Kallimanis, A.; Sgardelis, S.T. and Aravidis, I., 2006. Bear habitat suitability in relation to habitat types of European interest in NE pindos mountain range, Greece. pp: 321-326.
27
Minor, E.S. and Urban, D.L., 2007. Graph theory as a proxy for spatially explicit population models in conservation planning. Journal of Ecological Applications. Vol. 17, pp: 1771-1782.
28
Roever, C.L.; Van Aarde, R.J. and Leggett, K., 2012. Functional responses in the habitat selection of a generalist mega-herbivore, the African savannah elephant. Ecography. Vol. 35, pp: 1-11.
29
Roever, C.L.; Van, A.R.J. and Leggett, K., 2013. Functional connectivity within conservation networks: Delineating corridors for African elephants. Journal of Biological Conservation. Vol. 157, pp: 128-135.
30
Srisang, W.; Jaroensutasinee, K. and Jaroensutasinee, M., 2007. Assessing habitat suitability models with a virtual species aat Khao Nan national park, Thailand. Proceeding of world academy of science. Engineering and technology. Vol. 21, pp: 1307-6884.
31
Walpole, A.A.; Bowman, J.; Murray, D.L. and Wilson, P.J., 2012. Functional connectivity of lynx at their southern range periphery in Ontario, Canada. Landscape Ecology. Vol. 27, pp: 761-773.
32
Wang, X.; Weihua, X. and Ouyang, Zh., 2009. Integrating population size analysis into habitat suitability assessment: implications for giant panda conservation in the Minshah Mountain, China. The Ecological Society of Japan.
33
Wang, Y.; Yang, K. Bridgman, C.L. and Lin, L., 2008. Habitat suitability modeling to correlate gene flow with landscape connectivity. Journal of Landscape Ecology. Vol. 23, pp: 989-100.
34
ORIGINAL_ARTICLE
کمی سازی از همگسیختگی سیمای سرزمین به عنوان شاخصی برای ارزیابی زیستگاه حیات وحش (مطالعه موردی: منطقه حفاظت شده جاجرود)
یکپارچگی و ارتباط داشتن زیستگاهها در مناطق حفاظت شده برای دوام جمعیتهای گیاهی و جانوری مهم است. بررسی یکپارچگی مناطق حفاظت شده میتواند برای ارتباط دادن لکههای محدود شده و کمک برای مقابله با تأثیرات از همگسیختگی مفید واقع شود. هدف از این تحقیق کمی نمودن از همگسیختگی سیمای سرزمین بهمنظور بررسی زیستگاه گونههای مهم منطقه حفاظت شده جاجرود است. برای رسیدن به این هدف پس از تهیه نقشه کاربریهای منطقه با استفاده از تکنیکهای RS و GIS، عناصر از همگسیختگی برای ایجاد هندسههای از همگسیختگی استخراج گردید و با استفاده از سنجههای سیمای سرزمین ساختار و یکپارچگی زیستگاه گونههای کل و بز، قوچ و میش، پلنگ و آهو مورد بررسی قرار گرفت. نتایج این تحقیق نشان داد که بهطورکلی بیشترین افزایش از همگسیختگی در سیمای سرزمین و بین زیستگاههای جانوران در اثر موانع هندسه اول که شامل اراضی انسانساخت و جادههای آسفالت بود رخ داده است. همچنین بیشترین افزایش لکهگی برای قوچ و میش و آهو در هندسه اول، کل و بز در هندسه دوم (باغ) و برای پلنگ در هندسه چهارم (سد) رخ داده است. بسیاری از تعارضات از زیستگاههای گونههای حساس حیاتوحش میگذرد و اثرات جبرانناپذیر این تعارضات در درازمدت بیشتر مشخص خواهد شد. نتایج این تحقیق نشان میدهد با تحلیل سنجههای سیمای سرزمین در مناطق تحت حفاظت امکان شناسایی و الویتبندی مهمترین موانع حفظ یکپارچگی زیستگاه گونههای مختلف فراهم شده و امکان برنامهریزی جهت حفاظت از زیستگاه گونه بهوجود میآید.
http://www.aejournal.ir/article_90054_2ab5e334c43a9961184c908835cdedd9.pdf
2019-04-21
13
20
از همگسیختگی
سنجههای سیمای سرزمین
منطقه حفاظت شده جاجرود
زیستگاه
رقیه
صادق اوغلی
sadeghi.rm@gmail.com
1
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، کرج، ایران، صندوق پستی: 118-31746
AUTHOR
علی
جهانی
ajahani@ut.ac.ir
2
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، کرج، ایران، صندوق پستی: 118-31746
LEAD_AUTHOR
افشین
علیزاده شعبانی
ashabani@ut.ac.ir
3
گروه منابع طبیعی- محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
حمید
گشتاسب
meigooni1959@gmail.com
4
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، کرج، ایران، صندوق پستی: 118-31746
AUTHOR
براتی، ب.، 1394. ارزیابی یکپارچگی پارک ملی کلاه قاضی با استفاده از رهیافت اکولوژی سیمای سرزمین. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده محیط زیست. 130 صفحه.
1
رسولی،ع.؛ عباسیان،ش. و جهانبخش،س.، 1387. پایش نوسانهای سطح آب دریاچه ارومیه با پردازش تصاویر ماهوارهای چند سنجندهای و چند زمانهای. فصلنامه مدرس علوم انسانی. دوره 12، شماره 2، صفحات 53 تا 71.
2
رفیعی،ی.؛ملک محمدی،ب.؛ آبکار،ع.؛یاوری،ا.؛ رمضانی مهریان،م. وظهرابی،ح.، 1390. بررسی تغییرات زیست محیطی تالابها و مناطق حفاظت شده با استفاده از تصاویر چند زمانه سنجنده TM. محیط شناسی. سال 37، شماره 57، صفحات 65 تا 76.
3
زبردست، ل.؛ یاوری، ا.؛ صالحی، ا. و مخدوم، م.، 1390. استفاده از متریک اندازه موثر شبکه در تحلیل از همگسیختگی پوششهای جنگلی محدوده اثر جاده در پارک ملی گلستان. محیط شناسی. سال 37، شماره 58، صفحات 15 تا 20.
4
مهندسین مشاور بومآباد. 1381. طرح مدیریت مجموعه جاجرود. سازمان حفاظت محیط زیست. دفتر زیستگاهها و امور مناطق. جلد 11.
5
مجنونیان، ه.، 1380. پارکهای ملی و مناطق حفاظتشده (ارزشها وکارکردها).انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. تهران. 480 صفحه.
6
Ahern, j. and Andre, L., 2003. Applying landscape ecological concepts and metrics in sustainable landscape planning. landscape and urban planning. Vol. 59, pp: 65-93.
7
Anderson, J.R.; Hardy, E.E.; Roach, J.T and Witmer, R.E., 1976. Lands cover classification system for use with remote sensor data. United States Government Printing Office. Washington, USA. pp: 80-85.
8
Bennett, A.F., 2003. Linkages in the landscape. The role of corridors and connectivity in wildlife conservation 2nd ed. IUCN. The World Conservation Union, Gland. 262 p.
9
Crooks, K.R., 2002. Relative sensitivities of mammalian carnivores to habitat fragmentation. Journal of conservation biodiversity. Vol.16, No. 2, pp: 488-502.
10
Dramstad, W.E.; Olson, J.D. and Forman, R.T.T., 1996. Landscape Ecology Principles in Landscape Architecture and Land Use Planning, Washington, DC. Harvard University Graduate School of Design. Island Press and the American Society of Landscape Architects. 80 p.
11
Fahrig, L., 2003. Effects of habitat fragmentation on biodiversity. Annual Review of Ecology Evolution and Systematic. Vol. 34, pp: 487-515.
12
Girvetz, E.H.;Thorne, J.H.; Berry, A.M. and Jeager, J.A.G., 2008. Integration of landscape fragmentation analysis into regional planning: A statewide multi-scale case study from California, USA. Vol. 86, No. 3-4, pp: 205-218.
13
Jaeger,J.,2002. Landscape fragmentation: A transdisciplinary study according to the concept of environmental Threat Verlag Eugen Ulmer, Stuttgart, Germany. 447 p.
14
Jaeger, J.A.G.; Bertiller, R.; Schwick, C.; Muller, K.; Steinmeier, C.; Ewald, K.C. and Ghazoul, J., 2008. implementing landscape fragmentation as an indicator in the swiss monitoring system of sustainable development. Environmental management. Vol. 88, No. 4, pp: 737-751.
15
Jensen, J.R., 2005. Introductory Digital Image Processing: A Remote Sensing Perspective. Pearson Prentice Hall.
16
Leitao, A.B. and Ahren, J., 2002. Applying landscape ecological concepts & metrics in sustainable landscape planning. Landscape and urban planning. Vol. 59, pp: 65-93.
17
Mairota, P.; Cafarelli, B.; Boccaccio, L.; Leronni, V.; Labadessa, R.; Kosmidou, V. and Nagendra, H., 2013. Using landscape structure to develop quantitative baselines for protected area monitoring. Ecological indicators. Vol. 33, pp: 82-95.
18
McGarigal, K. and Marks, B.J., 1995.Fragstats: Spatial pattern analysis program for quantifying landscape structure. forest science department. Oregon state university, Corvallis.
19
Pichancourt, J.B.; Burel, F. and Auger, p., 2006. Assessing the effect of habitat fragmentation on population dynamics: an implicit modeling approach. Ecological modeling. Vol. 192, No. 3-4, pp: 543-556.
20
Saunders,S.C.; Mislivets, M.R.; Chen, J.; Cleland, D.T., 2002. Effects of roads on landscape structure within nested ecological units of the northern great lakes region, USA. Biological conservation. Vol. 103, No. 2, pp: 209-225.
21
Scariot, E.C.; Almeida, D. and Santos, J.E.D., 2015. Connectivity dynamics of araucaria forest and grassland surrounding passo fundo national forest, Southern Brazil. Natureza & conservação. Vol. 13, No. 1, pp: 54-59.
22
Townsend,P.A.; Lookingbill, T.R.; Kingdon, C.C. and Gardner, R.H., 2009. Spatial pattern analysis for monitoring protected area. Remote sensing of environment. Vol. 113, No. 7, pp: 1410-1420.
23
ORIGINAL_ARTICLE
تجزیه و تحلیل ساختار اجتماعی جمعیت قوچ و میش (Ovis orientalis) در پناهگاه حیاتوحش دره انجیر
قوچ و میش (Ovis orientalis) گونهای از راسته زوجسمان و خانواده گاوسانان است. پناهگاه حیاتوحش دره انجیر یکی از زیستگاههای شناخته شده این گونه در مرکز ایران است. این تحقیق با هدف تجزیه و تحلیل ساختار جمعیتی قوچومیش در مکانهای مختلف پناهگاه حیاتوحش دره انجیر طی سالهای 1391 لغایت 1394 برای فصول بهار (دوره برهزایی)، تابستان (دوره گرما و کم آبی)، پاییز (دوره جفتگیری) و زمستان (دوره سرما) انجام شد. نتایج مشاهدات نشان داد متوسط تعداد گروهها 10/87 رأس میباشد، 454 گله مشاهده شد که در مجموع 4934 رأس قوچ و میش را شامل میشدند. نسبت جنسی نر به ماده 69:31 و نسبت جنسی بره به ماده 65:35 بوده است. تفاوت معنیداری بین فصول و مکانهای مختلف از نظر متوسط تعداد گروهها وجود نداشت (0/05<P). بیش تر مشاهدات به فصل تابستان (150=n) مرتبط بوده که قوچ و میشها برای استفاده از منابع آبی به مکانهای که دارایمنابعی آبی هستند میروند. هم چنین بیش ترمشاهدات مربوط به مکان محیط بانی خوشومی (238=n) میباشد این مکان بهدلیل وجود منابع آبی و پناه مناسب سهم بیش تری را در مشاهدات به خود اختصاص داده است.
http://www.aejournal.ir/article_90202_008b1f5d480fcd8ae24a78b333482f4b.pdf
2019-04-21
21
26
ترکیب جنسی
جمعیت
قوچ و میش
پناهگاه حیات وحش دره انجیر
محبوبه
براتی
mb2spp@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشگاه یزد، یزد، ایران، صندوق پـستی: 741- 89195
AUTHOR
جلیل
سرهنگ زاده
jsarhangzadeh@yazd.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشگاه یزد، یزد، ایران، صندوق پـستی: 741- 89195
LEAD_AUTHOR
حسن
اکبری
haenv@yahoo.com
3
گروه محیط زیست، دانشگاه یزد، یزد، ایران، صندوق پـستی: 741- 89195
AUTHOR
اداره کل محیط زیست استان یزد. 1388. پناهگاه حیات وحش دره انجیر. انتشارات گل گندم، اصفهان.
1
اکبری، ح.؛ حبیبی پور، ا. و موسوی، س.ج.، 1392. بررسی ترجیح زیستگاهی و اندازه گروههای جبیر (Gazella bennettii) در پناهگاه حیات وحش دره انجیر یزد. بوم شناسی کاربردی. شماره 3، صفحات 81 تا 90.
2
ﺑﺎﺳﻤﻨﺠﯽ، ب. و ﻫﻤﺎﻣﯽ، م.ر.، 1389. ﺗﺤﻠﯿﻞ ﮐﺎرﮐﺮدﻫﺎی اﺛﺮ آﻟﻪ در ﺟﻤﻌﯿﺖﻫﺎی ﺟﺎﻧﻮری و ﺗﺎﺛﯿﺮ آن ﺑﺮ تنوعزیستی. همایش ملی تنوع و تاثیر آن بر کشاورزی و محیط زیست. ارومیه.
3
پهلوانی، ع.، 1383. ارزیابی زیستگاه قوچ و میش اوریال پارک ملی گلستان. محیط شناسی. شماره 35، صفحات 1 تا 8.
4
حبیب زاده، ن.، 1383. بررسی پویایی شناسی جمعیت قوچ و میش ارمنی (Ovis orientalis gmelini) منطقه حفاظت شده و پناهگاه حیات وحش انگوران استان زنجان .وزارت علوم، تحقیقات و فناوری. دانشگاه تهران.
5
حسینی، س.م.؛ رضایی، ح.ر.؛ وارسته مرادی، ح.؛ نادری، س. و نیکوی، ف.، 1393. بررسی فیلوژئوگرافی جمعیت قوچ و میشهای استان یزد براساس دادههای ژنوم میتوکندری. محیط زیست جانوری. شماره 3، صفحات 169 تا 177.
6
حسینی، س.م.؛ طیبی، ل.؛ یعقوبی، ح. و نیکوی، ف.، 1391. بررسی تغییرات جمعیتی، نرخ تولیدمثل و پراکنش کل و بز و قوچ و میش در منطقه حفاظت شده لشگردر در راستای برنامه ریزی و مدیریت بهتر این گونه. اولین همایش ملی حفاظت و برنامه ریزی محیط زیست. دانشگاه آزاداسلامی واحد همدان.
7
زمانی، ن.، 1389. بررسی و مقایسه عادات غذایی یوزپلنگ ایرانی در دو پناهگاه حیات وحش نایبندان و دره انجیر استان یزد. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه تهران.
8
ضیایی، ه.، 1387. راهنمای صحرایی پستانداران ایران. کانون آشنایی با حیاتوحش. تهران.
9
مصطفوی، ح.؛ حسنزاده کیابی، ب.؛ عبدلی، ا.؛ کمی، ح.ق.؛ سلمان ماهینی، ع.؛ ابراهیمی، م. و محرابیان، ا.، 1385. تنوع زیستی حیات وحش مهرهدار (ماهیان، دوزیستان، خزندگان، پرندگان و پستانداران) منطقه حفاظت شده مند. نخستین همایش اکولوژی. تهران. دانشگاه الزهرا.
10
مهندسین مشاور جامع ایران. 1393. مطالعات طرح مدیریت توجیهی-تفضیلی پناهگاه حیات وحش دره انجیر و نی باز. کتاب طرح.
11
Anderwartha, H.C. and Birch, L.C., 1954. The Distribution and Abundance of Animals. The university of Chicago Press, USA.
12
Barrette, C., 1991. The size of Axis deer fluid groups in Wilpattu National Park, Sri Lanka. Mammalia. Vol. 55, pp: 207-220.
13
Blank, D.; Ruckstuhl, K. and Yang, W., 2012. Influence of population density on group sizes in goitered gazelle (Gazella subgutturosa Guld, 1780). European Journal of Wildlife Reservation. Vol. 58, pp: 981-989.
14
Bro-Jorgensen, J., 2008. Dense habitat selecting for small body size: A comparative study on bovids. Oikos. Vol. 117, pp: 729-737.
15
Cunningham, P.L. and Wronski, T., 2011. Seasonal changes in group size and composition of Arabian sand gazelle Gazella subgutturosa marica Thomas, 1897 during a period of drought in central western Saudi Arabia. Current Zoology. Vol. 57, No. 1, pp: 36-42.
16
Farhadinia, M., 2004. The last stronghold: Cheetah in Iran. Vol. 40, pp: 11-14.
17
Firouz, E., 1974. Environment of Iran. National Society of the Conservation of Natural Resources and Human Environment, Tehran. 491 p.
18
Jarman, P.J., 1974. The social organisation of antelopes in relation to their ecology. Journal of Behaviour. Vol. 48, pp: 215-267.
19
Leuthold, W., 1977. African ungulates, a comparative review of their ethology and behavioural ecology. Springer Verlaj, Berlin.
20
Rodman, Ρ.S., 1988. Resources and group sizes in primates; in the ecology of social behavior. University of Chicago Press. pp: 83-108.
21
Tabeni, S. and Ojeda, R.A., 2005. Ecology of the Monte Desert small mammals in disturbed and undisturbed habitats. Journal of Arid Environment. Vol. 63, pp: 244-255.
22
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی ترکیب شیمیایی، انرژی قابل متابولیسم و روند تولید گاز ضایعات نانوایی و مقایسه آن با دانه های گندم و جو در منطقه ورامین
این مطالعه بهمنظور تعیین میزان انرژی متابولیسمی و روند تولید گاز ضایعات نانهای، بربری، لواش، سنگک، تافتون و مقایسه آن با گندم و جو انجام شد. انرژی متابولیسمی برای گندم، جو، بربری، لواش، سنگک و تافتون بهترتیب 13/23، 12/11، 13/76، 13/53، 13/9 و 13/59 بود. بالاترین میزان انرژی متابولیسمی مربوط به سنگک و کمترین مربوط به جو بود. گندم با جو همچنین گندم و جو با انواع نان خشک در انرژی متابولیسمی دارای اختلاف معنیدار بودند. میزان تولید گاز گندم، جو، بربری، لواش، سنگک و تافتون بهترتیب 94/033، 86/433، 94/900، 92/033، 96/767، 93/767 میلیلیتر در 200 میلیگرم ماده خشک بود. در تولید گاز جو با گندم و کلیه نانهای مورد آزمایش دارای اختلاف معنیدار بود. بیشترین میزان تولید گاز مربوط به نان سنگک و کمترین آن برای جو بود. نتایج این تحقیق نشان داد که میتوان از ضایعات انواع نان خشک بهعنوان ماده خوراکی با انرژی متابولیسمی بالا در جیره دام بهخصوص دامهای پرواری استفاده کرد.
http://www.aejournal.ir/article_90500_e12fa3b178bf54caf7e6ab05afd694b4.pdf
2019-04-21
27
32
تکنیک گاز
ضایعات نانوایی
نان خشک
نشاسته و انرژی قابل متابولیسم
ولی
بویر
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
AUTHOR
ناصر
کریمی
naser.karimi@hotmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
LEAD_AUTHOR
مجتبی
زاهدی فر
3
موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
AUTHOR
افضلزاده، ا.، 1382. تعیین ارزش غذائی ضایعات نان خشک. مجله علوم و صنایع کشاورزی. جلد 17، شماره 2، صفحات 13 تا 18.
1
رجبزاده، ن.، 1389. فناوری تهیه نان و مدیریت تولید آن. چاپ اول. موسسه انتشارات دانشگاه تهران.
2
سمیعیزفرقندی، م.؛ قورچی، ت.؛ و آهنیآذری، م.، 1389. تعیین اثرات فرآوری شیمیایی دو رقم جو بر ناپدید شدن شکمبهای ماده خشک، نشاسته و بخشهای کربوهیدرات در سیستم کربوهیدرات و پروتئین خالص کرنل. مجله علوم دامی. دوره 4، شماره 1، صفحات 35 تا 46.
3
ضیابری، ح. و کوهی، ح.،1380. اصول و روشهای نگهداری مواد غذائی. نشر علوم کشاورزی. تهران.
4
عبدیقزلجه، ع.؛ دانشمسگران، م.؛ نصیریمقدم، ح. و وکیلی، ع.، 1389. ارتباط بین وزن چگالی و فراسنجههای تولید گاز ارقام مختلف دانههای جو ایران در شرایط برون تنی. چهارمین کنگره علوم دامی ایران. پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران، کرج.
5
قدردان، م.ع.؛ مظاهری. ی. و رستگار، غ. ر.، 1386. بررسی فراوانی و انواع اجسام خارجی شکمبه و نگاری و وجود چسبندگی نگاری در گاومیشهای کشتار شده در کشتارگاه اهواز. مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 12، شماره 1، صفحات 27 تا 36.
6
مقدسی، ا.، 1391. راهنمای جامع بیماریهای شتر. چاپ اول. انتشارات نیلوبرگ. صفحات 381 تا 417.
7
مکدونالد، پ.؛ ادواردز، آر.ای.؛ گرینهال، جی.اف دی. و مورگان، سی.ای.، 2001. تغذیه دام. مترجم: نویدشاد، ف. و جعفری صیادی، ع.ر.، 1386. ویرایش ششم. انتشارات حقشناس. 764 صفحه.
8
نریمانی، ا.، 1388. سرویس اقتصادی جهان نیوز. اردیبهشت ماه.
9
وجگانی، م.، 1385. مجله جهان اقتصاد. نسخه شماره 3531.
10
وسلی، ان.ا.، 1997. راهنمای خوراکهای دام و طیور. مترجم: کامیاب، ع.ر.، 1380. نشر حقشناس.
11
هاشمی، م.، 1370. تغذیه دام، طیور و آبزیان. چاپ اول. انتشارات فرهنگ جامع.
12
AOAC. 2000. Official Methods of Analysis,17th Edition. Association of Official Analytical Chemists, Washington, D. C, USA.
13
Chase, L.E. and Sniffen, C.J., 1988. Balancing dairy ration to optimize fermantation; http://WWW. Inform.umd.edu.
14
Dubois, M.; Gilles, K.A.; Hamilton, J.K.; Rebers, P.A. and Smith, F., 1956. Colorimetric method for determination of sugars and related substances. Anal. Chem. Vol. 28, pp: 350-356.
15
Forbs, G.M., 1995. Vluntry food intake and diet selection in farm animal, CAB international. UK.
16
Karkalas, J., 1985. An improved enzymatic method for the determination of native and modified starch. J. Sci. Food Agric. Vol. 36, pp: 1019-1027.
17
Menke, K.H. and Steingass, H., 1988. Estimation of the energetic feed value obtained from analysis and in vitro gas production using rumen fluid. Animal research and development. Vol. 28, pp: 7-55.
18
Menke, K.H. and Steingass, H., 1987. Estimation of the energetic feed value obtained from chemical analysis and in vitro gas Production using rumen fluid. Anim. Res. Dev. Vol. 28, pp: 7-55.
19
Menke, K.H.; Raab, L.; Salewski, H.; Steingass, H.; Frits, D. and Schneider, W., 1979. The stimation of the digestibility and metabolizable energy content of ruminant feedingstuffs from the gas production when they are incubated with rumen liquor in vitro. J. Agric. Sci. Vol. 93, pp: 217-222.
20
NRC. 1996. National Research council, Nutrient requirements of Beef cattle, 6th Rev. edn. National academy press. Washington, D.C.
21
Orskov, E.R., 1992. Protein nutrition in ruminants. Academic Press. Ltd. London.
22
Orskov, E.R., 1995. Plant factors limiting roughage intake in ruminants, Fist FAO electronic conference (http://www.fao.org).
23
SAS. 2001. SAS/STAT Users guide: Version 8.02. SAS Institute Cary, NC, USA.
24
Schroeder, J.W., 1999. By-Products and regionally available alternative feedstuffs for dairy cattle. www.ext.nodak.edu.
25
Stokes, S.R., 1998. Balancing carbohydrates for optimal rumen function and animal health. http://stephenville.tamu.edu.
26
ORIGINAL_ARTICLE
بهبود فراسنجه های کیفی اسپرم منجمد-یخ گشایی شده قوچ با افزودن عصاره نعناع فلفلی در رقیق کننده
هدفاینپژوهشبررسیتأثیر عصارهگیاهنعناع فلفلیبه عنوان یکآنتی اکسیدانطبیعیبرکیفیتاسپرممنجمد-یخگشاییشدهقوچبود. برای این منظور از چهار رأس قوچ مغانی هفته ای دو بار اسپرم گیری شد و انزال ها به طور یکسان باهم مخلوط شدند. سپس نمونه ها با رقیق کننده حاوی سطوح مختلف عصاره نعناع فلفلی (0، 2، 4، 8، 12 و 16 میلی لیتر در دسی لیتر محلول رقیق کننده) رقیق شدند. نمونه هاپسازطیمراحلسردسازیو انجمادتازمانارزیابیدرداخلازتمایعنگه داریشدند. بعد از یخ گشایی، پارامترهای تحرک به وسیله سیستم کاسا، زنده مانی به روش رنگ آمیزی ائوزین-نیگروزین و تست یکپارچگی غشایی با محلول هیپواسموتیک مورد بررسی قرار گرفت. نتایج نشان داد که افزودن عصاره در سطوح 4 و 8 میلی لیتر، درصد تحرک کلی اسپرم ها را افزایش داد (0/05<P). هم چنین غلظت 4 میلی لیتر عصاره به طور معنی داری تحرک پیش رونده اسپرم ها را نسبت به گروه شاهد و گروه های تیماری حاوی سطوح بالاتر بهبود داد (0/05<P). در رقیق کننده حاوی 8 میلی لیتر عصاره، درصد صفات LIN، STR و VSL بالاتر بود (0/05<P). هم چنین افزودن سطوح 4 و 8 میلی لیتر عصاره، پارامترهای VCL و VAP را بهبود داد (0/05<P). سطوح 4 و 8 میلی لیتر عصاره، درصد زنده مانی ویکپارچگی غشای پلاسمایی اسپرم ها را نسبت به گروه شاهد بهبود داد (0/05<P)، اما ریختشناسیاسپرم ها تحت تاثیر تیمارها قرار نگرفت. در نتیجه استفاده از عصاره نعناع فلفلی در رقیق کننده منی منجر به بهبود کیفیت اسپرم منجمد-یخ گشایی شده قوچ شد که این اثر وابسته به دوز بود.
http://www.aejournal.ir/article_89637_9be4d399e76da68664b35e5ae4fb7a49.pdf
2019-04-21
83
90
اثرات آنتی اکسیدانی
عصاره نعناع فلفلی
اسپرم قوچ
منجمد- یخ گشایی
وحید
واحدی
vahediv@uma.ac.ir
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی مغان، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
LEAD_AUTHOR
نعمت
هدایت ایوریق
hedayatuma@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی مغان، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
Agarwal, A.; Nallella, K.P.; Allamaneni, S.S. and Said, T.M., 2004. Role of antioxidants in treatment of male infertility: an overview of the literature. Reproductive BioMedicine Online. Vol. 8, pp: 616-627.
1
Aitken, R.J. and Sawyer, D., 2003. The human spermatozoon not waving but drowning. Advances in Experimental Medicine and Biology. Vol. 518, pp: 85-98.
2
Andrabi, S.M.H., 2007. Fundamental principles of cryopreservation of Bos taurus and Bos indicus bull spermatozoa. Mini review. Int. International Journal of Agriculture and Biology. Vol. 9, pp: 367-369.
3
Arora, A.; Nair, G.M. and Strasburg, M.G., 1998. Structure activity relationships for antioxidant activities of a series of flavonoids in a liposomal system. Free Radical Biology & Medicine. Vol. 24, pp: 1355-1363.
4
Bailey, J.L.; Bilodeau, J.F. and Cormier, N., 2000. Semen cryopreservation in domestic animals: A damaging and capacitating phenomenon. Journal of Andrology. Vol. 21, pp: 1-7.
5
Bilodeau, J.F.; Chatterjee, S.; Sirard, M.A. and Gagnon, C., 2000. Levels of antioxidant defenses are decreased in bovine spermatozoa after a cycle of freezing and thawing. MolecularReproduction and Development. Vol. 55, pp: 282-288.
6
Blokhina, O.; Virolainen, E. and Fagerstedt, K.V., 2003. Antioxidants, oxidative damage and oxygen deprivation stress: a review. Annals of Botany. Vol. 91, 179 p.
7
Chatterjee, S.; Lamirande, E. and Gagnon, C., 2001. Cryopreservation alters membrane sulfhydryl status of bull spermatozoa: protection by oxidized glutathione. Molecular Reproduction and Development. Vol. 60, pp: 498-506.
8
Clulow, J.R.; Mansfield, L.J.; Morris, L.H.A.; Evans, G. and Maxwell, W.M.C., 2008. A comparison between freezing methods for the cryopreservation of stallion spermatozoa, Animal Reproduction Science. Vol. 108, pp: 298-308.
9
Daghigh Kia, H.; Farhadi, R.; Ashrafi, I. and Mehdipour, M., 2016. Anti-oxidative effects of ethanol extract of origanum vulgare on kinetics, microscopic and oxidative parameters of cryopreserved Holstein bull spermatozoa. Iranian Journal of Applied Animal Science. Vol. 6, No. 4, pp:783-789.
10
Daghigh Kia, H.; Olfati-Karaji, R.; Hoseinkhani, A. and Ashrafi, I., 2014. Effect of rosemary (Rosmarinus officinalis) extracts and glutathione antioxidants on bull semen quality after cryopreservation. Spanish Journal of Agricultural Research. Vol. 17, No. 12, pp: 98-105.
11
Hadian, J.; Ghasemnezhad, M. and Ranjbar, H., 2008. Antifungal potency of some essential oils in control of postharvest decay of strawberry caused by Botrytis cinerea, Rhizopus stolonifer and Aspergillus niger. Journal of Essential Oil Research. Vol. 11, pp: 553-562.
12
Hammerstedt, R.H.; Graham, J.K. and Nolan, J.P., 1990. Cryopreservation of mammalian sperm: what we ask them to survive. Journal of Andrology. Vol. 11, pp: 73-88.
13
Javanmardi, J.; Stushnoffb, C.; Lockeb, E. and Vivancob, J.M., 2003. Antioxidant activity and total phenolic content of Iranian Ocimum accessions. Food Chemistry. Vol. 83, pp: 547-555.
14
Khodaei Motlagh, M.; Sharafi, M.; Zhandi, M.; Mohammadi-Sangcheshmeh, A.; Shakeri, M.; Soleimani, M. and Zeinoaldini, S., 2014. Antioxidant effect of rosemary (Rosmarinus officinalis L.) extract in soybean lecithin-based semen extender following freeze thawing process of ram sperm. Cryobiology. Vol. 69, pp: 217–222
15
Kurşat, M.; Emre, I.; Yilmaz, Ӧ. and Erecevit, P., 2011. Antioxidant and antimicrobial activity in the seeds of Origanum vulgare L. subsp. gracile (C. Koch) Ietswaart and Origanum acutidens (Hand. -Mazz.) Ietswaart from Turkey. Grasas y Aceites. Vol. 62, No, 4, pp: 410-417.
16
Lessard, C.; Parent, S.; Leclerc, P.; Bailey, J.L. and Sullivan, R., 2000. Cryopreservation Alters the Levels of the Bull Sperm Surface Protein P25b. Journal of Andrology. Vol. 21, pp: 700-707.
17
Lotfipour, F.; Samiee, M. and Nazemiyeh, H., 2007. Evaluation of the antibacterial activity of Salvia sahendica and Phlomis caucasica. Pharmaceutical sciences, Journal of Faculty of Pharmacy, Tabriz University of Medical Sciences. Vol. 1, pp: 29-34.
18
Malo, C.; Gil, L.; Gonzalez, N.; Martínez, F.; Cano, R.; de Blas, I. and Espinosa, E., 2010. Anti-oxidant supplementation improves boar sperm characteristics and fertility after cryopreservation: comparison between cysteine and rosemary (Rosmarinus officinalis). Cryobiology. Vol. 61, pp: 142-147.
19
Malo, C.; Gil, L.; Cano, R.; Martínez, F. and Galé, I., 2011. Antioxidanteffect of rosemary (Rosmarinus officinalis) on boar epididymal spermatozoa during cryopreservation. Theriogenology. Vol. 75, pp: 1735-1741.
20
Rice-Evans, C.; Miller, N.J. and Paganga, G., 1997. Antioxidant properties of phenolic compounds. Trends in Plant Sciences. Vol. 2, pp: 152-159.
21
Roca, J.; Gil, M.A.; Hernandez, M.; Parrilla, I.; Vazquez, J.M. and Martinez, E.A., 2004. Survival and fertility of boar spermatozoa after freeze–thawing in extender supplemented with butylated hydroxytoluene. Journal of Andrology. Vol. 25, pp: 397-405.
22
Sikka, S.C., 2001. Relative impact of oxidative stress on male reproductive function. Current Medicinal Chemistry. Vol. 8, pp: 851-862.
23
Talpur, A.D., 2014. Mentha piperita (Peppermint) as feed additive enhanced growth performance, survival, immune response and disease resistance of Asian seabass, Lates calcarifer (Bloch) against Vibrio harveyi infection. Aquaculture. Vol. 420, pp: 71-78.
24
Vahedi, V.; Hedayat Evrigh, N.; Behroozlak, M. and Dirandeh E., 2018. Antioxidant effects of thyme (Thymus vulgaris L.)extract on ram sperm quality during cryopreservation. Vol. 8, No. 2, pp: 263-269
25
Yanishlieva, N.V. and Marinova, E.M., 1996. Antioxidative effectiveness of some natural antioxidants in sunflower oil. Zeitschrift für Lebensmittel-Untersuchung und Forschung. Vol. 203, No. 3, pp: 220-223.
26
Zanganeh, Z.; Zhandi, M.; Zare Shahneh, A.; Najafi, A.; Mahdi Nabi, M. and Mohammadi-Sangcheshmeh, A., 2013. Does rosemary aqueous extract improve buck semen cryopreservation? Small Ruminant Research. Vol. 114, No. 1, 120 p.
27
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین مقادیر سم پروفنوفوس در بافت چربی فوک خزری (Phoca caspica) در خزر جنوبی (ساحل دریایی استان گلستان و مازندران)، ایران
سم پروفنفوس یکی از سموم پر مصرف ارگانوفسفره میباشد. این سم با اثر بخشی سریع، موجودات جونده و مکنده بسیار گستردهای را کنترل میکند. بهعلت استفاده گسترده از این سم در مزارع اطراف سواحل دریای خزر، میزان تجمع زیستی سم پرفنوفوس را در 10 لاشه فوک خزری جمعآوری شده از سواحل استان گلستان و مازندران، اندازهگیری شد. فوک خزری تنها پستاندار دریای خزر است که در سالهای اخیر در خطر انقراض قرار گرفته است. لاشهها به آزمایشگاه منتقل و از بافت چربی جهت اندازهگیری سم پروفنوفوس نمونهگیری شد و پس از آماده سازی، نمونهها به دستگاه گاز کارماتوگرافی تزریق شدند و غلظت سم توسط دستگاه اندازهگیری شد. 100درصد نمونهها به سم پروفنوفوس آلوده بودند. میانگین غلظت سم در بافت چربی 0/73±3/68 میکروگرم بر کیلوگرم شناسایی شد. بیشترین مقدار این سم در بافت چربی 6 میکروگرم بر کیلوگرم وکمترین مقدار این سم 0/5 میکروگرم بر کیلوگرم اندازهگیری شد. با توجه به بالابودن غلظت سم پروفنوفوس در بافت فوکهای خزری و همچنین استفاده گسترده از این سم در کشاورزی جهت مقابله باآفات، جهت کاهش آلودگی دریای خزر و همچنین نجات افراد باقیمانده فوکهای خزری و همچنین سلامت سایر آبزیان دریای خزر، انجام اقدامات جهت جلوگیری از ورود این آلاینده خطرناک به دریای خزر ضروری بهنظر میرسد.
http://www.aejournal.ir/article_90514_db6fbc04d091ab30b3ee89d9942f79bb.pdf
2019-04-21
91
96
دریای خزر
فوک خزری
آلودگی
پروفنوفوس
سیده ملیحه
حسینی
malihhosseini90@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
سمیه
نمرودی
snamroodi2000@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
امیرصیاد
شیرازی
amirsayadshirazi@yahoo.com
3
رئیس مرکز درمانی و تحقیقاتی فوک خزری، آشوراده، ایران
AUTHOR
انالیزا
زاکارونی
annalisa.zaccaroni@unibo.it
4
گروه دامپزشکی بهداشت عمومی و آسیب شناسی حیوانات، دانشکده دامپزشکی دانشگاه بولونیا، ایتالیا
AUTHOR
شکرزاده، م.؛ کریمی، م. و محمدی، ح.، 1394. اندازهگیری باقیمانده سم دیازینون در ماهی سفید، کپور و کفال مناطق صیادی حاشیه مرکزی دریای خزر. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. دوره 25، شماره 134، صفحات 183 تا 192.
1
غلامیپور، س.؛ صفری، ر.؛ لالوئی، ف.؛ فیروزکندیان، ش.؛ پورغلام، ر.؛ نصرالهزاده، ح. و عربها، ف.، 1392. تعیین مقدار باقیمانده حشرهکشهای ارگانوفسفره در ماهی کپور (Cyprinus carpio) در مصب رودخانههای شمال ایران. مجله نوآوری در علوم و فناوری غذایی (علوم و فناوری غذایی). دوره 6، شماره 3، صفحات 83 تا 88.
2
قاسماف،آ.، 1382. اکولوژی دریای خزر. ترجمه شریعتی، ا.، موسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران. 204 صفحه.
3
ماشینچیانمرادی، ع.؛ اسماعیلیساری، ع.؛ فاطمیاسلامی، س.م. و بینش، م.، 1386. بررسی غلظت حشرهکش ارگانوکلرهء ددت در بافت عضلانی ماهی سفید در سواحل جنوبشرقی دریای خزر. انسان و محیط زیست. شماره 9، صفحات51 تا 58.
4
Addison, R.F. and Smith, T.G., 1974. Organochlorine residue levels in Arctic ringed seals: variation with age and sex. Oikos. pp: 335-337.
5
Addison, R.F.; Kerr, S.R.; Dale, J. and Sergeant, D.E., 1973. Variation of organochlorine residue levels with age in Gulf of St. Lawrence harp seals (Pagophilus groenlandicus). Journal of the Fisheries Board of Canada. Vol. 30, No. 5, pp: 595-600.
6
Burkepile, D.E.; Moore, M.T. and Holland, M.M., 2000. Susceptibility of five nontarget organisms to aqueous diazinon exposure. Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 64, No. 1, pp: 114-121.
7
Effimoff, I., 2000. The oil and gas resource base of the Caspian region. Journal of Petroleum. Science and Engineering, Vol. 28, pp: 157-159.
8
Geptnor V.G., 1976. Mammals of the Soviet Union. Moscow. Higher School. 717 p.
9
Helle, E.; Olsson, M. and Jensen, S. (1976). PCB levels correlated with pathological changes in seal uteri. Ambio. pp: 261-262.
10
Hernandez, F.; Serrano, R.; Roignavarro, R.F.; Martianezbravo, Y. and Opez, F.J.L., 2000. Persistent Organochlorines and Organophosphorus Compounds and Heavy Elements in Common Whale (Balaenoptera physalus) from the Western Mediterranean Sea. J of Marine Pollution Bulletin. Vol. 40, No. 5, pp: 426-433.
11
Jones, P.D., 1998. Analysis of organic contaminants in New Zealand marine mammals. Department of Conservation.
12
Karami, S. and Abdollahi, M., 2010. Toxic influence of organophosphate, carbamate, and organochlorine pesticides on cellular metabolism of lipids, proteins, and carbohydrates: A systematic review. J of Human and Experimental Toxicology. Vol. 30, No. 9, pp: 1119-1140.
13
Khuraskin, L.S.; Zakharova, N.A.; Kuznestsov, V.V.; Khroshko, V.I. and Valedskaya, O.M., 2004. Fisheries researches in the Caspian. CaspNIRKh, Astrakhan. 400 p.
14
Krylov, V.L., 1990. Ecology of the Caspian Seal. Finnis oaine. J Environ. Contam. Toxicol. Vol. 42, pp: 32-36.
15
Lin, L.; Liu, J.; Zhang, K. and Chen, Y., 2003. An experimental study of the effects of profenofos on antioxidase in rabbits. Wei sheng yan jiu. Journal of hygiene research. Vol. 32, No. 5, pp: 434-435.
16
Mikhailov, M.V., 1997. Mouths of the rivers of Russia and adjacent countries: present, past, and future. Geos, Moscow. pp: 25-35. (in Russian)
17
Moustafa, G.G.; Ibrahim, Z.S.; Hashimoto, Y.; Alkelch, A.M.; Sakamoto, K.Q.; Ishizuka, M. and Fujita, S., 2007. Testicular toxicity of profenofos in matured male rats. Archives of toxicology. Vol. 81, No. 12, pp: 875-881.
18
Saabia, L.; Maurer, I. and Bustosobregon, E., 2009. Melatonin prevent damage elicited by the organophosphorous pesticide diazinon on the mouse testis. J. Ecotoxicol. Environ. Saf. Vol. 72, No. 3, pp: 938-942.
19
Tanabe, S.; Niimi, S.; Minh, T.B.; Miyazaki, E.A. and Petrov, A., 2003. Temporal Trends of Persistent Organochlorine Contamination in Russia: A Case Study of Baikal and Caspian Seal. J of Archives of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 44, pp: 533-545.
20
Wilson, S.C.; Eybatov, T.M.; Amano, M.; Jepson, P.D. and Goodman, S.J., 2014. The role of canine distemper virus and persistent organic pollutants in mortality patterns of Caspian seals (Pusa caspica). Vol. 9, No. 7, pp: 235-247.
21
Zaki, N.I., 2012. Evaluation of profenofos intoxication in white rats. Nat Sci. Vol. 10, pp: 67-77.
22
ORIGINAL_ARTICLE
پهنه بندی مخاطرات تنوع زیستی در منطقه حفاظت شده البرزمرکزی بخش جنوبی (تحت مدیریت استان البرز) با استفاده از تکنیک DANP
حفاظت از تنوع زیستی مستلزم شناسایی مخاطرات اثرگذار بر آن است.3مطالعه حاضر با هدف، شنـاسـایـی معیـارها و پهنه بندی مخاطرات تنوع زیستی با استفاده از روش های تلفیقی تصمیم گیری چندمعیاره (DANP(ANP-DEMATEL در منطقه حفاظت شده البرز مرکزی بخش جنوبی که تحت مدیریت اداره کل محیط زیست البرز است، به انجام رسیده است. با استفاده از مرور منابع مختلف معیارهای ارزیابی مخاطرات تنوع زیستی در دو بخش اقتصادی- اجتماعی و اکولوژیک در قالب 33 زیرمعیار و شاخص های مربوطه شناسایی شد. زیرمعیارهای مناسب تعیین شد و با استفاده از شاخص های غربال سازی و روش آنتروپی شانون معیارها تلخیص شد. سپس با استفاده از تکنیک تلفیقی DANP اولویت بندی شاخص های اثرگذار انجام شد. زیرمعیارهای برتر که اهمیت بیش تری داشتند و به عنوان اثرگذار شناخته شده بودند، پهنه بندی شدند و نقشه پهنه بندی مخاطرات تنوع زیستی حاصل شد. وضعیت مخاطرات دره طبقه بندی شد. طبقه بحرانی حدود 48/01%، در معرض خطر بالا حدود 34/99%، در معرض خطر متوسط حدود 9/96%، در معرض خطر کم حدود 5/34% و طبقه آسیب ناپذیر حدود 1/69%، از کل شناسایی شد. نتایج نشان دهنده کارایی روش فوق در تعیین شاخص های مناسب و اثرگذار و نیز تعیین پهنه های نیازمند برنامه های حفاظتی در مناطق حفاظت شده است. حفاظت از تنوع زیستی مستلزم شناسایی مخاطرات اثرگذار بر آن است. مطالعه حاضر با هدف، شناسایی معیارها وپهنه بندی مخاطرات تنوع زیستی با استفاده از روش های تلفیقی تصمیم گیری چندمعیاره (DANP(ANP-DEMATEL درمنطقه حفاظت شده البرز مرکزی بخشجنوبی که تحت مدیریت اداره کل محیط زیست البرز است، به انجام رسیده است. با استفاده از مرور منابع مختلف معیارهای ارزیابی مخاطرات تنوع زیستی در دو بخش اقتصادی-اجتماعی و اکولوژیک در قالب 33 زیرمعیار و شاخص های مربوطه شناسایی شد. زیر معیارهای مناسب تعیین شد و با استفاده ازشاخص های غربال سازی و روش آنتروپی شانونمعیارها تلخیص شد.سپس با استفاده از تکنیک تلفیقیDANP اولویت بندیشاخص های اثرگذار انجام شد. زیرمعیارهای برترکه اهمیت بیش تری داشتند و به عنوان اثرگذار شناخته شده بودند، پهنه بندی شدند و نقشه پهنهبندی مخاطرات تنوعزیستی حاصل شد. وضعیت مخاطرات در5 طبقه، طبقهبندی شد. طبقه بحرانی حدود 01/48%، در معرض خطر بالا حدود 99/34%، در معرض خطرمتوسط حدود 9/96%، در معرض خطر کم حدود 5/34% و طبقه آسیب ناپذیر حدود 1/69%، از کل شناسایی شد. نتایج نشـان دهنـده کارایی روش فوق در تعیین شاخصهای مناسب و اثرگذار و نیز تعیین پهنه های نیازمند برنامه های حفاظتی در مناطق حفاظت شده است.
http://www.aejournal.ir/article_90571_6b5588d945dfdd2f975dfc5687ab2053.pdf
2019-04-21
97
104
پهنه بندی
مخاطرات تنوع زیستی
تکنیک DANP
آنتروپی شانون
المیرا
نوروزی
e.noroozi.ne@gmail.com
1
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، کرج، ایران
AUTHOR
شراره
پورابراهیم
sh_pourebrahim@ut.ac.ir
2
گروه محیط زیست ،دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران، صندق پستی: 4314-3158777878
LEAD_AUTHOR
حمید
گشتاسب
meigooni1959@gmail.com
3
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، کرج، ایران
AUTHOR
علی
جهانی
ajahani@ut.ac.ir
4
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، کرج، ایران
AUTHOR
جعفرنژاد، ا.؛ احمدی، ا. و ملکی، م.ح.، ١٣۹۰. ارزیابی تولید ناب با استفاده از رویکرد ترکیبی از تکنیک های ANP و DEMATEL در شرایط فازی. فصلنامه مطالعات مدیریت صنعتی. دوره ٨، شماره ۲٨، صفحات 1 تا 22.
1
رضایی لعل، آ.؛ دانه کار، ا.: خراسانی، ن.ا. و مجنونیان، ه.، 1387. ارزیابی چندمعیاره کرانه ساحلی استان مازندران با هدف سنجش درجه حساسیت و تعیین مناطق تحت حفاظت ساحلی. هشتمین همایش بین المللی سواحل، بنادر و سازه های دریایی. صفحات 1 تا 8.
2
صادقی پورمروی، م.؛ پوربابایی، ا.ع.؛ علیخانی، ح.؛ حیدری، ا. و منافی، ز.، 1395. ارزیابی عملکرد باکتری های اکسیدکننده گوگردی جداسازی شده از خاک معدن مس و شناسایی مولکولی آن ها براساس توالی .rRNA مجله زیست شناسی ایران. دوره 30، شماره 1، صفحات 40 تا 54.
3
عبادی، ع.،1393. دومین همایش ملی برنامه ریزی، حفاظت حمایت از محیط زیست و توسعه پایدار. تهران. مرکز همایش های بین المللی دانشگاه شهید بهشتی.
4
غلامی، ع.؛ اجتهادی، ح.؛ قاسم زاده، ف. و قرشی الحسینی،ج.، ١٣٨٥. تنوع زیستی گونه های گیاهی اطراف منطقه حفاظت شده دریاچه بزنگان. مجله زیست شناسی ایران. جلد ١۹، شماره ٤، صفحات 398 تا 407.
5
مصطفوی، م.؛ حسن زاده کیابی، ب.؛ عبدلی، ا.؛ محرابیان، ا.ر.؛ ابراهیمی، م.؛ سلمان ماهینی، ع.ر.؛ کمی، ح.ق.؛ نقی نژاد، ع.ر.؛ دلشب، ح.؛ مرادی، آ. و گزی، ب.، 1386. تنوع زیستی منطقه حفاظت شده مند. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. اداره کل حفاظت محیط زیست استان بوشهر.
6
مهندسین مشاور بوم آباد. 1381.مطالعه طرح مدیریت زیست محیطی منطقه جاجرود. جلد 10، سازمان حفاظت محیط زیست. دفتر زیستگاه ها و امور مناطق. 193 صفحه.
7
Bagheri, Z.; Pourebrahim, SH. and Kaboli, M., 2015. Prioritizing Biodiversity Threats in Iran Protected Areas using TOPSIS method. Journal of Global Ecology and Environment. Vol. 2, No. 4, pp: 209-220.
8
Baral, H.; Keenan, R.J.: Sharma, S.K.; Stork, N.E. and Kasel, S., 2014. Spatial assessment & mapping of biodiversity & conservation priorities in a heavily modified & fragmented production landscape in north centeral Victoria, Australia, Ecological Indicators. Vol. 36, pp: 552-562.
9
Burgess,J., 2006. Hearing ordinary voices cultural studies, vernacular creativity and digital storytelling. Continuum. J of Media and cultural studies. Vol. 20, No. 2, pp: 201-214.
10
Gardner, T.A.; Barlow, J.; Sodhi, N.S. and Peres, C.A., 2010, Amulti-regional assessment of tropical forest biodiversity in a human modofied world, Biological Conservation. Vol. 143, pp: 2293-2300.
11
Hsut, C.C., 2013. Integrating DANP and modified grey relation theory for the selection of an outsourcing provider. Expert systems with applications. Vol. 40, No. 6, pp: 2297-2304.
12
Ibisch, P.L.; Nowicki, C.; Muller, R. and Araujo, N., 2002, Methods for the assessment of habitat and species conservation status in data poor countries case study of Pleurothallidinae of the Andean rain forests of Bolivia. Congress of Conservation of Biodiveersity in The Andes and Amazon. pp: 255-246.
13
Leitao, B. and Andre, J.A., 2002. Applying landscape ecological concepts and metrics in sustainable landscape planning. Landscape and urban planning. Vol. 59, pp: 65-93.
14
Leunberger, D.Z. and Wakin, M., 2007. Sustainable development in Public administration planning: an exploration of social justice, equity, and citizen inclusion, Public Administration Theory Network. Vol. 29, No. 3.
15
Malczewski, J., 1999. GIS and Multicriteria Decision Analysis. John wiley and Sons. New York. USA. 392 p.
16
Sabatini, M.C.; Verdiell, A.; Iglesias, R.M. and Vidal, M., 2007. A quantitative method for zoning of protected areas and its spatial ecological implications. Journal of Environmental Management. Vol. 83, pp: 198-206.
17
Thorn, J.S.; Nijman, V.; Smith, D. and Nekaris, K., 2009. Ecological niche modelling as a technique fo assessing threats and setting conservation priorities for Asian slow lorises (Primates: Nycticebus). Divers. Distrib. Vol. 15, pp: 289-298.
18
Townsend, P.; Todd, A.; Lookingbill, R.; Clayton, C.; Kingdon, R. and Gardner, H., 2009. Spatial Pattern Analysis for Monitoring Protected Area. Remote Sensing of Environment. Vol. 113, pp: 1410-1420.
19
Xiaofeng, L.; Yi, Q.; Diqiang, L.; Shirong, L.; Xiulei, W.; Bo, W. and Chunquan, Z., 2011, Habitat evaluation of wild Ammur tiger (Panthera tigris altacia) and conservation priority setting in north-eastern China, Journal of Environmental Management. Vol. 92, pp: 31-42.
20
Zeleny, M. and Cochrane, J.L., 1982. Multiple criteria decision making, McGraw-Hill, New York.
21
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تنوع ژنتیکی و اثر انتخاب ژن های RNA ریبوزومی و ناقل در ژنوم میتوکندری شترهای تک کوهانه و دو کوهانه
حفاظت از ذخایر ژنتیکی با آگاهی از ساختار ژنتیکی و بررسی ژنوم میتوکندری بین و درون گونه ای یک شاخص مناسب از میزان تنوع ژنتیکی جهت مطالعه ژنتیک جمعیت است. از آن جائی که ژن های غیرکدکننده 16sRNA، 12sRNA و tRNAها عناصر تنطیمی درگیر در همانندسازی و رونویسی میتوکندری می باشند، در این پژوهش توالی های 2 rRNAو 22 tRNAموجود در ژنوم میتوکندریایی شترهای تک کوهانه و دوکوهانهمقایسه و مورد تجزیه و تحلیل بیوانفورماتیکی قرارگرفت. نتایج نشان دادکه در مقایسه توالی ژن های RNA غیرکدکننده شترهای تک کوهانه و دوکوهانه 46 نوکلئوتید در توالی 16sRNA، 45 نوکلئوتید در 12sRNA و 44 نوکلئوتید در tRNAها متغیر می باشد که تنها 2 ژن rRNA و 4 ژن از tRNAها نسبت به تست های تکامل خنثی معنی دار بودند. بررسی پیامدهای ساختاری این نوکلئوتیدهای متغیر با استفاده از مدل سازی تأیید کرد که تنها نوکلئوتیدهای متغیر در حلقه D از ژن tRNA-Trp سبب تغییر شکل فضایی ساختار برگ شبدری tRNA تریپتوفان و انرژی آزاد گیبس می شود. براساس تجزیه و تحلیل های این پژوهش ژن های RNA غیرکدکننده ژنوم میتوکندری گونه های شتر حفاظت شده اند.
http://www.aejournal.ir/article_90766_224d6cf806fb154a23ea6784743269be.pdf
2019-04-21
105
110
ژنوم میتوکندری
اثر انتخاب
حفاظت ژنتیکی
نواحی غیرکدکننده
زهرا
رودباری
rodbari.zahra@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه جیرفت، جیرفت، ایران
AUTHOR
خدیجه
نصیری
khadijeh_nasiri@yahoo.com
2
گروه فیزیولوژی، دانشکده علوم ورزشی، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران
LEAD_AUTHOR
ازغندی، م. و طهمورث پور، م.، 1393. تجزیه و تحلیل ژنتیکی و فیلوژنتیکی ناحیه دی لوپ در شترهای تک کوهان و دوکوهان ایران. پژوهش در نشخوارکنندگان. دوره 3، شماره 2، صفحات 93 تا 108.
1
شهابی، ا. و طهمورث پور، م.،1393. تجزیه و تحلیل بیوانفورماتیکی و فیلوژنتیکی ژن های NADH3 وNADH4L ژنوم میتوکندری شتر دوکوهانه ایران. بیوتکنولوژی کشاورزی. دوره 7، شماره 3، صفحات 163 تا 173.
2
عباس دلویی, ط.؛ سخاوتی، م.ه. و طهمورث پور، م.، 1395. تجزیه و تحلیل بیوانفورماتیکی و فیلوژنتیکی ژن COX3 میتوکندری شترهای تک کوهانه و دوکوهانه ایران. پژوهش های علوم دامی ایران. شماره 2، صفحات 361 تا 369.
3
Avise, J.C., 2000. Phylogeography: the history and formation of species.Harvard University Press. Massachusetts, United States.
4
Ballard, J.W.O. and Whitlock, M.C., 2004. The incomplete natural history ofmitochondria. Molecular Ecology. Vol. 13, pp: 729-744.
5
Bao, H.; Zhao, C.; Zhang, L.; Li, J. and Wu, C., 2008. Single-nucleotide polymorphisms of mitochondrially coded subunit genes of cytochrome c oxidase in five chicken breeds. Mitochondrial DNA. Vol. 19, pp: 461-464.
6
Chen, X.; Prosser, R.; Simonetti, S.; Sadlock, J.; Jagiello, G. and Schon, E.A., 1995. Rearranged mitochondrial genomes are present in human oocytes.American Journal of Human Genetics. Vol. 57, pp: 239-247.
7
Cooper, G.M. and Hausamn, R.E., 2007. The Cell: A Molecular Approach. 4nd ed. OXFORD UNIV PR, Sinauer Associates, Inc.
8
Cui, P.; Ji, R.; Ding, F.; Qi, D.; Gao, H.; Meng, H.; Yu, J.; Hu, S. and Zhang, H., 2007. A complete mitochondrial genome sequence of the wild two-humped camel (Camelus bactrianus ferus): an evolutionary history of camelidae. BMC Genomics. Vol. 8, 241 p.
9
Drummond, A.J.; Rambaut, A.; Shapiro, B. and Pybus, O.G., 2005.Bayesiancoalescent inference of past population dynamics from molecular sequences.Molecular Biology and Evolution. Vol. 22, pp: 1185-1192.
10
Freeland, J.R.; Petersen, S.D. and Kirk, H., 2011. Molecular Ecology. 2th Edition. Wiley-Blackwell. New Jersey, United States.
11
Gray, M., 2012. Mitochondrial Evolution. Cold Spring Harbor perspectives in biology. Vol. 4, 011403 p.
12
Han, J.; Ochieng, J.W.; Lkhagva, B. and Hanotte, O., 2004. Genetic diversity & relationship of domestic Bactrian camels (Camelus bactrianus) in China & Mongolia. J of Camel Practice and Research. Vol. 11, pp: 97-99.
13
Helm, M.; Brulé, H.; Friede, D.; Giegé, R.; Puetz, D.O.E.R.N. and Florentz, C., 2000. Search for characteristic structural features of mammalian mitochondrial tRNAs. RNA. Vol. 6, pp.1356-1379.
14
Hilborn, R.; Quinn, T. P.; Schindler, D.E. and Rogers, D.E.,2003. Biocomplexity & fisheries sustainability. Proceedings of the national academy of sciences. Vol. 100, pp: 6564-6568.
15
Hughes, J.B.; Daily, G.C. and Ehrlich, P.R., 1997. Population diversity: its extent and extinction. Science. Vol. 278, pp: 689-692.
16
Hussain, T.; Babar, M.E.; Musthafa, M.M.; Saif, R.; Hussain, F.; Aqeel, M. and Yaqub, A., 2015. Mitochondrial ATP6 & ATP8 genes based molecular diversity & phylogenetic analysis in Punjab urial (Ovisvignei punjabiensis). J of animal and plant sciences. Vol. 25, pp: 311-317.
17
Ji, R.; Cui, P.; Ding, F.; Geng, J.; Gao, H.; Zhang, H.; Yu, J.; Hu, S. and Meng, H., 2009. Monophyletic origin of domestic bactrian camel (Camelusbactrianus) & its evolutionary relationship with the extant wild camel (Camelus bactrianus ferus). Animal genetic. Vol. 40, pp: 377-382.
18
Kujoth, G.C.; Bradshaw, P.C.; Haroon, S. and Prolla, T.A., 2007. The Role of Mitochondrial DNA Mutations in Mammalian Aging. PLoS Genetic. Vol. 3, 24 p.
19
Librado, P. and Rozas, J., 2009. DnaSP v5: A software for comprehensive analysis of DNA polymorphism data. Bioinformatics. Vol. 25, pp: 1451-1452.
20
Lole, K.S.; Bollinger, R.C.; Paranjape, R.S.; Gadkari, D.; Kulkarni, S.S.; Novak, N.G.; Ingersoll, R.; Sheppard, H.W. and Ray, S.C., 1999. Full-Length Human Immuno deficiency Virus Type 1 Genomes from Subtype C-Infected Seroconverters in India, with Evidence of Intersubtype Recombination. Virology Journal. Vol. 73, pp: 152-160.
21
Manfredi, G.; Thyagarajan, D.; Papadopoulou, L.C.; Pallotti, F. and Schon E.A., 1997. The fate of human sperm-derived mtDNA in somatic cells. TheAmerican Journal of Human Genetics. Vol. 61, pp: 953-960.
22
Patwardhan, A.; Samit, R. and Amit, R., 2014. Molecular markers in phylogenetic studies-a review. Journal of Phylogenetics & Evolutionary Biology.
23
Ramos-Onsins, S.E. and Rozas, J., 2002. Statistical properties of new neutralitytests against population growth. Molecular Biology and Evolution. Vol. 19, pp:2092-2100.
24
Tamura, K.; Stecher, G.; Peterson, D.; Filipski, A. and Kumar, S., 2013. MEGA6: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 6.0. Molecular Biology and Evolution. Vol. 30, pp: 2725-2729.
25
Zuker, M., 2003. Mfold web server for nucleic acid folding and hybridization prediction. Nucleic acids research. Vol. 31, pp: 3406-3415.
26
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی زیستگاه و مهم ترین عوامل موثر بر پراکنش مرال (Cervus elaphus maral) در پارک ملی گلستان
تکه تکه شدن زیستگاهها و جزیرهای شدن جمعیتها و به دنبال آن شکار بیرویه موجب شده که گونه مرال دچار وضعیتیآسیبپذیر و درخطر گردد.از اینرو برای بهبود وضعیت حفاظت و مدیریت این گونه، در ابتدا باید زیستگاههای بالقوه و مطلوب گونه شناسایی شوند. هدف از انجام این پژوهش مدلسازی مطلوبیت زیستگاه مرال در پارک ملی گلستان میباشد. بدین منظور از رویکرد حداکثر آنتروپی ( MaxEnt) و 35 نقطه حضور گونه بهعنوان متغیر وابسته و 10 متغیر محیطی بهعنوان متغیر مستقل زیست محیطی مؤثر بر پراکنش مرال استفاده گردید. نتایج این مطالعه براساس آزمون جک نایف نشان میدهد که مهمترین شاخص تأثیرگذار بر پراکنش مرال متغیرهای فاصله از جاده، ارتفاع و پوشش گیاهی میباشد و متغیر جهت تأثیر ناچیزی در پراکنش گونه دارد. مهمترین مناطق حضور اینگونه در نواحی مرکزی و غربی پارک میباشد. دقت و توانایی مدل پیشبینی برای این گونه براساس مقدار سطح زیرمنحنی (AUC) برابر با 0/95 بوده که نشاندهنده پیشبینی عالی مدل میباشد. ارتفاع مطلوب نیز برای مرال در محدوده 1200 تا 1800 متری، فاصله 4000 متری از روستاها و شیب کم تر از 30 درصد میباشد هم چنین گونه مرال در پارک ملی گلستان گونهای وابسته به منابع آبی میباشد.
http://www.aejournal.ir/article_90901_aa540284f4a50c7cda0171e3c5d683d9.pdf
2019-04-21
111
118
مرال
مطلوبیت زیستگاه
آنتروپی بیشینه
پارک ملی گلستان
میثم
مددی
maysam.mm65@chmail.ir
1
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
حسین
وارسته مرادی
varasteh@gau.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان ، گرگان، ایران
AUTHOR
اکرم
کریمی
akram.karimi69@gmail.com
3
گروه محیط زیست، دانشکده محیط زیست، کرج، ایران
AUTHOR
ابراهیمی،ح.،1390. مطالعه عوامل مؤثر بر انتشار و فراوانی شوکا (Capreolus capreolus) در جنگلهای هیرکانی: مطالعه موردی جنگل آموزشی و پژوهشی خیرود. پایاننامه کارشناسی ارشد. دانشگاه تهران. 122 صفحه.
1
آخانی، ح.، 1383. فلور مصور پارک ملی گلستان. جلد اول. موسسه انتشارات و چاپ دانشگاه تهران. تهران.
2
پرویان،ن.؛ماهینی،ع. س.و وارسته مرادی،ح.،1391. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه مرال بهروش تحلیل عاملی بومشناختی در منطقه حفاظتشده جهاننما. سومین همایش ملی مقابله با بیابانزایی و توسعه تالابهای کویری ایران.
3
سلمان ماهینی،ع.ر.،1388. شالوده حفاظت محیط زیست. انتشارات راه دانش سبز. تهران. 337 صفحه.
4
قلی پور،م.؛سلمان ماهینی،ع.ر.؛وارسته مرادی،ح؛ وکیابی،ب.، 1391. بررسی اثر اختلاف نظر کارشناسان در وزن دهی معیارها بر ارزیابی زیستگاه مرال. دومین کنفرانس برنامهریزی و مدیریت محیط زیست.
5
همامی، م.ر.؛ اسماعیلی، س. و سفیانیان، ع.، 1394. پیشبینی پراکنش یوزپلنگ آسیایی، پلنگ ایرانی و خرس قهوهای در پاسخ به متغیرهای محیطی در استان اصفهان. فصلنامه بومشناسی کاربردی. سال 4، شماره 13، صفحات 23 تا 36.
6
Beier, P.; Majka, D. and Garding, E., 2006. Arizona Missing Linkages: Munds Mountain Black Hills Linkage Design. Report to Arizona Game and Fish Department. School of Forestry, Northern Arizona University. 95 p.
7
Ceballos, G. and Ehrlich, P.R., 2002. Mammal population losses and the extinction crisis. Science. Vol. 296, pp: 904-907.
8
Giovanelli, J.G.; Siqueira, M.F.; Haddad, C.F. and Alexandrino, J., 2010. Modeling a spatially restricted distribution in the neotropics: How the size of calibration area affects the performance of five presence-only methods. Ecological Modeling, Vol.221, pp: 215-240.
9
Guisan, A. and Zimmermann N.E., 2000. Predictive habitat distribution models in ecology. Ecological Modelling. Vol. 135, pp: 147-186.
10
Kiabi, B.H.; Gaemi, A.; Jahanshahi, M. and Sassani, A., 2004. Population status, biology and ecology of the Maral) Cervus elaphus maral( in Golestan National Park, Iran. Zoology in the Middle East. No. 33, pp: 125-138.
11
Morrison, M.L.; Marcot, B.G. and Mannan, R.W., 1992. Wildlife-habitat relationships: Concepts and applications. University of Wisconsin Press, Madison, Wisconsin, USA. 343 p.
12
Olsson, O. and Rogers D.J., 2009. Predicting the distribution of a suitable habitat for the white stork in southern Sweden: identifying priority areas for reintroduction and habitat restoration. Animal Conservation. Vol. 12, pp: 62-70.
13
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological modeling. Vol. 190, No. 3, pp: 231-259.
14
Steven, J.P., 2004. A Maximum Entropy Approach to Species Distribution Modeling. Twenty-First International Conference on Machine Learning. pp: 655-662.
15
Wikramanayake, E.; McKnight, M.; Dinerstein, E.; Joshi, A.; Gurung, B. and Smith, D., 2004. Designing a conservation landscape for tigers in Human-Dominated environments. Conservation Biology. Vol. 18, No. 3, pp: 844-839.
16
Wu, W.; Li, Y. And Hu, Y., 2016. Simulation of potential habitat overlap between red deer (Cervus elaphus) and roe deer (Capreolus capreolus) in northeastern China. Peer J. Vol. 4, pp: 1756-1777.
17
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی و تحلیل فیلوژنتیکی ناحیه COXI در برخی از نژادهای بز ایرانی
DNA میتوکندریایی یکی از گستردهترین نشانگرهای مولکولی برای مطالعات فیلوژنتیک در حیوانات به علت ساختار ژنوم ساده آن است.این مطالعه ویژگیهای ژنتیکی بزهای بومی را با استفاده از تجزیه و تحلیل توالی ( DNA Cytocrome oxidase I (COXI برای شناسایی و تمایز بین سه نژاد (نجدی، عدنی و مرخز) ایران بررسی میکند. استخراج DNA با استفاده از روش بهینه شده نمکی انجام شد و ژن سیتوکروم اکسیداز I به روش PCR با یک جفت پرایمر، تکثیر گردید. درخت فیلوژنتیکی با استفاده از نرم افزار 6 Mega بهدست آمد. توالی COXI از 60 بز دارای تنوع هاپلوتیپی 0/47 و تنوع نوکلئوتیدی 0/0005 بود. تجزیه و تحلیل ها به کمک رویه Composition برنامه BioEdit نشان داد این توالی برای ناحیه COXI شامل 28/97 درصد نوکلئوتید A و 25/52 درصد نوکلئوتید C و 15/86 درصد نوکلئوتید G و 66/29 درصد نوکلئوتید T میباشد که نسبت C+G، چهل و دو درصد و A+T، پنجاه و هشت درصد است. ارتباط تکاملی به وسیله درخت فیلوژنتیک نمایش داده شد.درخت فیلوژنی نشان داد که بزهای ایرانی در یک شاخه جداگانه خوشهبندی شده است. این نتیجه به طور گسترده از توزیع جغرافیایی این نژادها در ایران پیروی می کند و می تواند در طراحی برنامههای حفاظت و مدیریت نژادهای بز ایرانی مورد استفاده قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_90903_b1c5f7b86afac4bb303976d5f143a7d8.pdf
2019-04-21
119
124
COXI
تنوع ژنتیکی
آنالیز فیلو ژنتیکی
بز ایران
رضا
سید شریفی
reza_seyedsharifi@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
LEAD_AUTHOR
نجات
بادبرین
badbarin1688@yahoo.com
2
مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان کرمانشاه، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرمانشاه، ایران
AUTHOR
آلبوشوکه، س.ن.؛ طهمورث پور، م. و نصیری، م.ر.، 1395.شناسایی و توالی یابی ژن MT-COX1 در مرغ بومی خراسان. ژنتیک در هزاره سوم. جلد ۱۲، شماره ۲، صفحات ۳۵۲۰ تا ۳۵۲۷.
1
توکلیان، ج.، 1378. نگرشی بر ذخایر ژنتیکی دام و طیور بومی ایران. موسسه تحقیقات علوم دامی کشور. صفحه 451.
2
عباسی دلویی، ط.؛ سخاوتی، م.ه. و طهمورث پور م.، 1394. تجزیه و تحلیل بیوانفورماتیکی و فیلوژنتیکی ژن COX۳ میتوکندری شترهای تک کوهانه و دوکوهانه ایران. پژوهش های علوم دامی ایران. جلد ۸. شماره ۲. صفحات 361-369.
3
لولایی، ف.، 1379. بررسی تنوع ژنتیکی ماهی Barbus capitoدر استانهای مازندران و گیلان. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه تربیت مدرس. صفحه 69.
4
هوشمند، م. 1384. ژنوم میتوکندری. چهارمین همایش ملی بیوتکنولوژی جمهوری اسلامی ایران، کرمان. صفحه 124.
5
Bradley, D.G.; MacHugh, D.E.; Cunningham, P. and Loftus, R.T., 1996. Mitochondrial diversity and the origins of African and European cattle. National Academi of Science. USA. Vol. 93, pp: 5131-5135.
6
Bruford, M.; Bradley, D. and Luikart, G., 2003. DNA markers reveal the complexity of livestock domestication. National Academi of Science. Vol. 3, pp: 900-910.
7
Davidzon, G. and Dimauro, S., 2005. Mitochondrial DNA and disease. Annals of medicine. Vol. 37, pp: 222-232.
8
Graff, C., 1999. Mitochondrial medicine-recent advances. Journal of Internal Medicine. Vol. 246, pp: 11-23.
9
Hiendleder, S.; Lewalski, H.; Wassmuth, R. and Janke, A., 1998. The complete mitochondrial DNA sequence of the domestic sheep (Ovis aries) and comparison with the other major ovine haplotype. Molecular Biology and Evolution. Vol. 47, pp: 441-448.
10
Hiendleder, S.;Kaupe, B. and Janke,A.,2002. Molecular analysis of wild and domestic sheep questions curret nomen clature and provides evidence for domestication from two different subspecies. Royal society. Vol. 69, pp: 893-904.
11
Liu, R.Y.; Lei, C.Z. and Yang, G.S., 2006. The Genetic diversity of mtDNA D-loop and the origin of Chinese goats. Acta Genetica Sinica. Vol. 33, No. 5, pp: 420-428.
12
Javanrouh, A.A.; Khodamoradi, S. and Seyedabadi, H.R., 2016. D-loop region sequence genetic diversity phylogenetic evolution in sheep. Online Journal of Veterinary Research. Vol. 20, No. 5, pp: 353-361.
13
Seyedabadi, H.R.; Pahlevan Afshari, K.and Abdulmaleki, A., 2016. Mitochondrial diversity and phylogenetic structure of Markhoz goat population. Irainaian Journal of Applied Animal Science. Vol. 6, No. 3, pp: 679-684.
14
Zhang, Z.H.; Gong, Y.F.; Liu, Z.Z.; Jia, Q. and Wang, L.Z., 2006. The polymorphism of mtDNA D-loop of Chinese sheep breeds. Department of Animal Science and Technology. Vol. 28, pp: 165-170.
15
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تغییرات تنوع زیستی پرندگان در فصول مختلف سال (مطالعه موردی پارک ملی کلاه قاضی)
در این پژوهش تغییرات جمعیت، تراکم و تنوع پرندگان در 4 ایستگاه مطالعاتی با تیپ های زیستگاهی متفاوت که به عنوان ایستگاه های پایش هر فصل درنظر گرفته شده به روش ترانسکت خطی در طول یک سال (1395-1396) برآورد شد. برای تعیین تنوع گونه ها از شاخص های سیمپسون، شانون - وینر و بریلوئین و یکنواختی با استفاده از شاخص های سیمپسون و کامارگو نیز محاسبه شد. برایارزیابی شاخص های تنوع گونه ای، از نرم افزار Ecological Methodology و برای تجزیه داده ها از نرم افزار Excel استفاده شد. در طول این پژوهش 74 گونه پرنده مشاهده و شناسایی شده که بیش ترین فراوانی متعلق به گونه های Galerida Cristata و Ammomanes Deserti و Alectoris Chukar است. براساس نتایج به دست آمده بیش ترین مقدار شاخص های تنوع (4/091 و 4/372) مربوط به فصل زمستان، که بیانگر بیش ترین تنوع گونه ای و کم ترین مقدار شاخص های تنوع (3/607 و 3/221) مربوط به فصل پاییز، که بیانگر کم ترین تنوع گونه ای است.
http://www.aejournal.ir/article_90922_5c45c2e17e6aa0e7fe8dde1f9260814e.pdf
2019-04-21
125
132
تنوع گونه
پرندگان
پارک ملی کلاه قاضی
ترانسکت
شاخص
میلاد
لطیفی
milad.latifi6@gmail.com
1
باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد اصفهان (خوراسگان)، دانشگاه آزاد اسلامی، اصفهان، ایران
AUTHOR
مینو
مشتاقی
m_moshtaghie@yahoo.com
2
باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد اصفهان (خوراسگان)، دانشگاه آزاد اسلامی، اصفهان، ایران
LEAD_AUTHOR
علیرضا
رادان
aliradan73@gmail.com
3
باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد اصفهان (خوراسگان)، دانشگاه آزاد اسلامی، اصفهان، ایران
AUTHOR
اجتهادی، ح.؛ سپهری، ع. و عکافی، ح.، 1391. روش های اندازه گیری تنوع زیستی. چاپ دوم. دانشگاه فردوسی مشهد. 230 صفحه.
1
براتی، ب.؛ زبردست، ج. و رایگانی، ل.، 1396. رهیافت اکولوژی سیمای سرزمین (منطقة مورد مطالعه: پارک ملی و پناهگاه حیات وحش کلاه قاضی). مجله آمایش سرزمین. سال 9، شماره 1، صفحات 153 تا 168.
2
جوانمردی، س.؛ خباز، ع.پ. و پورخباز، ح.، 1388. بررسی بوم سازگان و جغرافیای زیستی پارک ملی کلاه قاضی. اطلاعات جغرافیایی (سپهر). سال 18، شماره 70، صفحات 48 تا 53.
3
کابلی، م.؛ کرمی، م.؛ بهروز، ر.؛ اسدی، س.ب. و کریمی، ص.، 1388. عوامل موثر بر پراکنش و فراوانی پرندگان در پارک ملی کلاه قاضی و پناهگاه حیات وحش موته در استان اصفهان. نشریه علوم و تکنولوژی محیط زیست. سال 11، شماره 1، صفحات 121 تا 129.
4
کریمی، س.؛ مرادی، ح.و. و قدیمی، م.، 1391. مطالعه تغییرات شاخص های تنوع زیستی جامعه پرندگان در تیپ های پوششی متفاوت جنگل شصت کلاته گرگان. مجله حفاظت و بهره برداری از منابع طبیعی. سال 1، شماره 1، صفحات 1 تا 18.
5
مصطفوی، ح.، 1386. تنوع زیستی منطقه حفاظت شده مند. انتشارات دانشگاه شهید بهشتی، تهران.
6
منصوری، ج.، 1392. راهنمای پرندگان ایران. چاپ دوم. انتشارات فرزانه. 513 صفحه.
7
نجمی زاده، س. و یاوری، ا.ر.، 1384. ارزیابی توان محیط زیستی پارک ملی خبر برای زونبندی و برنامهریزی به کمک .GIS محیط شناسی. سال 31، شماره 38، صفحات 47 تا 58.
8
یزدان داد، ح.، 1390. بررسی تغییرات تنوع و فراوانی پرندگان در اکوسیستم های آبی استان خراسان رضوی. محیط زیست جانوری. سال 3، شماره 1، صفحات 45 تا 58.
9
حجتی، و. و جلالپور، م.، 1396. بررسی فون پرندگان پناهگاه حیات وحش عباس آباد در استان اصفهان. محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 2، صفحات 75 تا 86.
10
طبیعی، ا. و ابراهیمی، ن.، 1392. تعیین وضعیت تنوع گونه ای پرندگان آبزی زمستان گذران تالاب میقان در استان مرکزی. مجله زیست شناسی جانوری تجربی. سال 2، شماره 2، صفحات 23 تا 33.
11
فیروز، ا.، 1378. حیات وحش ایران. مرکز نشر دانشگاهی تهران. 491 صفحه.
12
منصوری، ج.، 1387. راهنمای صحرایی پرندگان ایران، انتشارات کتاب فرزانه، چاپ دوم. 513 صفحه.
13
Barnes, B.V.; Pregitzer, K.S. and Spies, T.A., 1998. Ecological forest site classification, J. Forest. Vol. 80, pp: 493-498.
14
Buckland, T.S., 2008. Estimating Bird abundance: Mating methods work. J. Bird. Con. Inter. Vol. 18, pp: 91-108.
15
Hoyer, M.V. and Canfield, D.E., 1994. Bird abundance and species richness on Florida lakes: influence of trophic status, lake morphology and aquatic macrophytes. Hydrobiologia. Vol. 279-280, pp: 1-14.
16
Holden, A., 2016. Environment and tourism. 3rd Ed. Routledge, Taylor & Francis. 280 p.
17
Kutt, A. and Martin, T., 2010. Bird foraging height predicts bird species response to woody vegetation change. Biodiversity & Conservation. Vol. 19, No. 8, pp: 2247-2262.
18
Lindenmayer, D.B. and Likens, G.E., 2010. The science and application of ecological monitoring. Biological conservation. Vol. 143, No. 6, pp: 1317-1328.
19
Porter, R. and Aspinall, S., 2013. Birds of the Middle East: Bloomsbury Publishing.
20
Tantipisanuh, N. and Gale, G.A., 2018. Identification of biodiversity hotspot in national level Importance of unpublished data. Vol. 13, pp: 2-10.
21
Thomas, C.D.; Gillingham, P.K.; Bradbury, R.B.; Roy, D.B.; Anderson, B.J.; Baxter, J.M.; Bourn, N.A.; Crick, H.Q.; Findon, R.A. and Fox, R., 2012. Protected areas facilitate species’ range expansions. Proceedings of the National Academy of Sciences. Vol. 109, No. 35, pp: 14063-14068.
22
Valerio, F.; Basile, M.: Balestrieri, R.; Posillico, M.; Di Donato, S.; Altea, T. and Matteucci, G., 2016. The reliability of a composite biodiversity indicator in predicting bird species richness at different spatial scales. Ecological Indicators. Vol. 71, pp: 627-635.
23
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی و تعیین پراکنش مکانی و زمانی انگل های خارجی کبک (Alectoris chukar) در منطقه حفاظت شده بهرام گور
انگل های خارجی با خون خواری از پرندگان، در انتقال عوامل بیماری زای مختلف نقش کلیدی دارند. هدف از مطالعه حاضر، شناسایی و تعیین پراکنش انگل های خارجی کبک های وحشی منطقه حفاظت شده بهرام گور بود. روش انجام این تحقیق، نمونه برداری و شناسایی به روش مرفولوژیک، مولکولی و تبارشناسی بود. از اواخر بهار تا اواخر پاییز 1395 اقدام به جمع آوری نمونه ها شد. تعداد 29 کبک به روش تصادفی طبقه بندی شده از زیستگاه های دشتی، کوهستـانی، تپه ماهوری و باغی منطقه زنده گیری و انگل های خارجی به وسیله پنس از سر کبک جمع آوری و به شیشه حاوی الکل 70 درصد منتقل شدند و سپس برای شناسایی بـه آزمایشگاه انتقـال داده شدند. از دستگاه استریومیکروسکوپ و کلیدهای تشخیصی کتاب های انگل شناسی و هم چنین از روش های مولکولی جهت شناسایی انگل ها استفاده شد. تمام انگل های خارجی، کنه تشخیص داده شدند. در مجموع 40 عدد کنه جمع آوری شد که 38 عدد کنه (95%) متعلق به جنس Ornithodoros و گونه Ornithodoros canestrini و 2 عدد کنه (5%) متعلق به جنس Hyalomma و گونه Hyalomma sp بود. گونه Ornithodoros canestrini در زیستگاه باغی (45%) و در فصل پاییز (5/57%) بیش ترین فراوانی را داشت درحالی که گونه Hyalomma sp. تنها در زیستگاه تپه ماهوری (5%) و فصـل بهار (5%) حضور داشت. بنابراین، گونه Ornithodoros canestrini گونه غالب منطقه شناخته شد. با توجه به اهمیت این گونه ها در انتقال بیماری ها به پرندگان و سایر گونه های حیات وحش، اقدامات بهداشتی و مدیریتی مناسب جهت کنترل و مبارزه با این انگل های خارجی باید اعمال شود.
http://www.aejournal.ir/article_90972_cb123222d51c425660d6a0dde8c7ce6d.pdf
2019-04-21
133
138
کنه های سخت
کنه های نرم
کبک
زیستگاه
منطقه حفاظت شده بهرام گور
مهین
اسدی
mahinasadi5177@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، واحد آباده، دانشگاه آزاد اسلامی، آباده، ایران
AUTHOR
هانیه
نوذری
hnowzari@iauabadeh.ac.ir
2
گروه محیط زیست، واحد آباده، دانشگاه آزاد اسلامی، آباده، ایران
LEAD_AUTHOR
امینی نسب، م.، 1386. مدیریت و کنترل بیماری های پرندگان به عنوان یک راه کار بوم شناختی جلوگیری از نابودی تنوع زیستی. دومین همایش ملی کشاورزی بوم شناختی ایران. صفحات 10 تا 21.
1
توسلی، م.، 1380. حشره شناسی دامپزشکی.انتشارات دانشگاه ارومیه. ارومیه. 521 صفحه.
2
توکلی، م.، 1376. بررسی انتشار جغرافیایی کنه های نرم و سخت در استان لرستان. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه تربیت مدرس. دانشکده علوم پزشکی. 105 صفحه.
3
ثقفی پور، ع.؛تلمادره ی، ز. و فرزین نیا، ب.، 1391. پراکندگی جغرافیایی کنه ها در شهرستان قم در سال های 1389-90 .مجله دانشگاه علوم پزشکی خراسان شمالی. دوره4، شماره 3، صفحات 389 تا 391.
4
خیاط نوری، م. و هاشم زاده فرهنگ، ح.، 1390. بررسی تنوع گونه ای و تغییرات فصلی کنه های سخت گوسفندان شهر تبریز در سال 1388. مجله آسیب شناسی درمانگاهی دامپزشکی. دوره 5، شماره 3، صفحات 1273 تا 1279.
5
دهقانی، ر. و طالاری، ص.، 1383. فون کنه های پس استیگماتی (Acari: Metastigmata) شهرستان کاشان. مجله پژوهش و سازندگی. شماره 65، صفحات 19 تا 23.
6
شمسی، م. و بهرامی، ع.، 1388. کلیات بندپایان در دامپزشکی. انتشارات دانشگاه ایلام. ایلام. 439 صفحه.
7
شافعی کلوانق،ا.، 1394. بررسی پراکندگی و شناسایی کنه های سخت دام های اهلی و تعیین آلودگی آن ها به ویروس تب خونریزی دهنده کریمه کنگو (CCHF) با روش (RT-PCR) در شهرستان هریس آذربایجان شرقی ایران. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه تربیت مدرس. دانشکده علوم پزشکی.
8
طاهریان،م.؛کایدی،م.؛حسینی، ا. و بهرهی،ا.، 1393. پراکندگی و تعیین فون کنه های سخت و نرم شهرستان خرم آباد، استان لرستان. فصلنامه دانشگاه علوم پزشکی لرستان. دوره 16، شماره 2، صفحات 5 تا 15.
9
مهندسین مشاور جامع ایران. 1389. طرح جامع مدیریت پارک ملی قطرویه- منطقه حفاظت شده بهرام گور.سازمان حفاظت محیط زیست ایران.
10
عسکریان، ف.؛ عنایتی، ا.؛ عمویی، ا. و یزدانی چرایی، ج.، 1390. بررسی فون، پراکندگی جغرافیایی و فعالیت فصلی کنه های سخت در شهرستان ساری. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. دوره 21، شماره 83، صفحات 25 تا 33.
11
منصوری،ج.، 1379.پرنده شناسی. انتشارات دفتر نشر فرهنگ اسلامی. 294 صفحه.
12
نعمان، و.؛ عبدی گودرزی، م.؛ نبی نژاد، ع.؛ حیدری، م. و خلیلی فرد، م.، 1385. شناسایی کنه های سخت نشخوارکنندگان اهلی در دو منطقه اکولوژیکی استان اصفهان. مجله پژوهش و سازندگی. امور دام و آبزیان. شماره 77، صفحات 89 تا 95.
13
هاشم زاده فرهنگ،ح.؛نامداریان،م.؛شیرازی،ش.و شهبازی،پ.، 1387. بررسی انگل های خارجی ماکیان بومی شهرستان تبریز. مجله دامپزشکی ایران. دوره 4، شماره 4، صفحات 97 تا 100.
14
Calvet, C.; Estrada, R.; Lucientes, J. and Estrada, A., 2003. Ectoparasite tick and chewing lice of red-legged partridge, Alectoris rufa, in Spain. Medical and veterinary Entomology. Vol. 17, pp: 33-37.
15
http://www.microsoft.com/excel,accessed31October2013.
16
Khattak, R.M.; Sharafat, A.; Jahangir, M.; Nasir khan, M.; Azhar, R. and, Furhan, I., 2012. Prevalence of Ectoparasites in wild & Domesticated Grey Francolin (Francolinus pondicerianus) & Black Partridges (Francolinus francolinus) from Khyber Pakhtoonkhwa Province of Pakistan. J of Zoology. Vol. 44, No. 5, pp: 1239-1244.
17
Kumar, S.; Stecher, G. and Tamura, K., 2016. MEGA7: molecular evolutionary genetics analysis version 7.0 for bigger datasets. Journal of Molecular Biology and Evolution. Vol. 33, pp: 1870-1874.
18
Millan, J.; Gortazar, C.; Martin, M.; Pas, M. and Villafuerte, R., 2004. Comparative survey of the ectoparasite fauna of wild and farm-reared red-legged partridges (Alectoris rufa), with an ecological study in wild populations. Parasitol Res. Vol. 93, pp: 79-85.
19
Nabian, S. and Rahbari, S., 2008. Occurrence of Soft and Hard Ticks on Ruminants in Zagros Mountainous Areas of Iran. Iranian Journal of Arthropod-Borne Diseases. Vol. 2, No. 1, pp: 16-20.
20
Nortea, A.C.; Dasilvaa, L.P.; Tenreirod, P.J.Q.; Flgueirase, M.S.; Araujoa, P.M.; Lopesa, P.B.; Matosf, C.; Rosag, A.; Ferreirah, P.J.S.G.; Encarnacaoi, P.; Rochaa, A.; Escuderoj, R.; Andaj, P.; Nanciob, M.S. and Lopes, I., 2015. Patterns of tick infestation and their Borrelia burgdorferi S1 infection in wild birds in Portugal. Journal of Ticks and Tick-borne Diseases. Vol. 6, No. 6, pp: 743-750.
21
Sambrook, J. and Russell, D.W., 2001. Molecular cloning: a laboratory manual, Cold Spring Harbor Laboratory Press. New York. USA. 2344 P.
22
SPSS Inc. Released 2008. SPSS Statistics for windows. Version 17.0. Chicago. IL: SPSS Inc.
23
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه اثر کنجاله کنجد خام و فرآوری شده به روش تخمیر حالت جامد بر خصوصیات استخوان درشت نی و برخی فراسنجه های خون جوجه های گوشتی
این آزمایش با هدف مقایسه اثر کنجاله کنجد خام و فرآوری شده به روش تخمیر حالت جامد بر خصوصیات استخوان درشت نی و برخی فراسنجه های خون انجام شد. تخمیر کنجاله کنجد با کشت مخلوط مایع حاوی لاکتوباسیلوس پلانتاروم در نسبت 1 به 1/2 انجام شد. پس از 28 روز تخمیر، میزان اسید فایتیک و تانن به ترتیب از 17/39 و 15/26 به 5/26 و 2/22 میلی گرم در گرم کنجاله کاهش یافت. تعداد 315 قطعه جوجه گوشتی راس 308 در قالب طرح کاملاً تصادفی با 7 تیمار آزمایشی و 3 تکرار اختصاص یافت. تیمارهای آزمایش شامل جایگزینی 25، 50 و 75 درصد کنجاله کنجد خام یا تخمیری با کنجاله سویا (تیمار شاهد) در جیره بودند. نتایج این آزمایش نشان داد استفاده از سطوح 25 و 50 درصد کنجاله کنجد تخمیری، مشابه با تیمار شاهد، افزایش میزان خاکستر، کلسیم و فسفر استخوان درشت نی جوجه های گوشتی را نسبت به کنجاله کنجد خام بهبود داد (0/05>P). هم چنین میزان کلسیم و فسفر خون در تیمارهای حاوی کنجاله کنجد تخمیر شده نسبت به سایر تیمارها افزایش معنی داری یافت (0/05>P).
http://www.aejournal.ir/article_91115_430aad6f0899f8923b6f3dc43ad96efc.pdf
2019-04-21
139
144
اسیدفایتیک
تانن
تخمیر
جوجه گوشتی
کنجاله کنجد
آیدا
مظاهری
aida.mazaheri66@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
محمود
شمس شرق
m_shams196@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
بهروز
دستار
dastar392@yahoo.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
امید
عشایری زاده
o_ashayeri@yahoo.com
4
گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
محروقی، آ.، ۱۳۸۸. پرورش عملی بلدرچین از ابتدا تا انتها. انتشارات سروآ. چاپ اول. 432 صفحه.
1
Adebiyi, O.A.; Famakinwa, A.; Adeniji, O.A. and Omojola, A.B., 2015. Effect of Dietary Replacement of Soyabean Meal with Toasted Sesame Seed on Performance, Tibia Bone Mineralisation and Gut Morphology of Broilers Chicken. American Journal o Experimental Agriculture. Vol. 5, pp: 156-163.
2
Afinah, S.; Yazid, A.M.; Shobirin-Anis, M.H. and Shuhaini, M., 2010. Phytase: application in food industry. International Food Research Journal. Vol. 17, pp: 13-21.
3
AOAC. 1995. Official Methods of Analysis, 16th ed. Association of Official Analytical Chemists, Arlington, VA.
4
Bassiri, A. and Nahapetian, A., 1977. Differences in concentrations and interrelationships of phytate, phosphorus, magnesium, calcium, zinc and iron in wheat varieties grown under dryland and irrigated Conditions. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 25, pp:1118-1122.
5
Dei, H.K.; Rose, S.P.; Mackenzie, A.M. and Amarowicz, R., 2008. Growth performance of broiler chickens fed diets containing shea nut (Vitellaria paradoxa, Gaertn.) meal fermented with Aspergillus niger. Poultry Science. Vol. 87, pp: 1773-1778.
6
Didar, Z. and Haddad Khodaparast, M.H., 2011. Effect of Different Lactic Acid Bacteria on Phytic Acid Content and Quality of Whole Wheat Toast Bread. Journal of Food Biosciences and Technology. Vol. 1, pp:1-10.
7
Eizaguirre, I.; Urkia, N.G.; Asensio, A.B.; Zubillaga, I.; Zubillaga, P.; Vidales, C.; Garcia renzana, J.M. and Aldazabal, P., 2002. Probiotic supplementation reduces the risk of bacterial translocation in experimental short bowel syndrome. J of Pediatric Surgery. Vol. 37, pp: 699-702.
8
Fazhi, X.; LVmu, L.; Jiaping, X.; Kun, Q.; Zhide, Z. and Zhangyi, L., 2011. Effects of fermented rapeseed meal on growth performance and serumparameters in ducks. Asian-Australasian J of Animal Sciences. Vol. 24, pp:678-684.
9
Gibson, R.; Yeudall, F.; Drost, N. and Callinan, T., 1998. Dietary intervention to prevent Zinc deficiency. The American Journal of Clinical Nutrition. Vol. 4, pp: 484-487.
10
Gordon, R.W. and Ronald, D., 1998. Influence of supplemental phytase calcium and phosphors utilization on lying hens. Poultry Science. Vol. 77, pp:290-294.
11
Heres, L.; Engel, B.; van Knapen, F.; de Jong, M.C.; Wagenaar, J.A. and Urlings, H.A., 2003. Fermented liquid feed reduces susceptibility of broilers for Salmonella enteritidis. Poultry Science. Vol. 82, pp: 603-11.
12
Jimenez, N.; Esteban-Torres, M.; Mancheno, J.M.; de las Rivas, B. and Munoz, R., 2014. Tannin degradation by a novel tannase enzyme present in some Lactobacillus plantarum strains. Applied and Environmental Microbiology. Vol. 80, pp: 2991-2997.
13
Kim, W.K.; Donaldson, L.M.; Herrera, P.; Wood Ward, C.L.; Kubena, L.F.; Nisbet, D.J. and Ricke, S.C., 2004. Effects of different bone preparation methods (fresh, dry and fat-free dry) on bone parameters and the correlations between bone breaking strength and the other bone parameters. Poultry Science. Vol. 83, pp: 1663-1666.
14
Lease, J.G., 1966. The Effect of Autoclaving Sesame Meal on its Phytic Acid Content and on the Availability of its Zinc to the Chick. Poultry Science. Vol. 45, pp: 237-241.
15
Lopez, H.W.;Krespine, V.; Guy, C.; Messager, A.; Demigne, C. and Remesy, C., 2001. Prolonged fermentation of whole wheat sourdough reduces phytate level and increases soluble magnesium. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 49, pp: 2657-2662.
16
Morais, S.; Shterzer, N.; Rozman Grinberg, I.; Mathiesen, G.; Eijsink, V.; Axelsson, L.; Lamed, R.; Edward, A. and Mizrahib, I., 2013. Establishment of a Simple Lactobacillus plantarum Cell Consortium for Cellulase-Xylanase Synergistic Interactions. Applied and Environmental Microbiology. Vol. 17, pp: 5242-5249.
17
Mukhopadhyay, N., 2001. Effect of fermentation on apparent total and nutrient digestibility of sesame (Sesamum indicum) seed meal in rohu, Labeo rohta (hamilton) Fingerlings. Acta Ichthyologicaet Piscat. Vol. 31, pp:19-28.
18
Mulugeta, F. and Gebrehiwot, T., 2013. Effect of sesame cake supplementation on feed intake, body weight gain, feed conversion efficiency and carcass parameters in the ration of sheep fed on wheat bran and teff (Eragrostis teff) straw. Momona Ethiopian Jof Science. (MEJS). Vol. 5, pp: 89-106.
19
Mutus, R.; Kocabag, N.; Alp, M.; Acar, N.; Eren, M. and Gezen, S.S., 2006. The Effect of Dietary Probiotic Supplementation on Tibial Bone Characteristics and Strength in Broilers. Poultry Science. Vol. 85, pp:1621-1625.
20
SAS Institute, SAS User's Guide. 2003. Version 9.1 edition. SAS Institute Inc. Cary, NO.
21
Singhania, R.R.; Patel, A.K; Soccol, C.R. and Pandey, A., 2009. Recent advances in solid-state fermentation. Biochemical Engineering. Vol. 44, pp:13-18.
22
Zhang, B. and Coon, C.N., 1997. The relationship of various tibia bone measurements in Hens. Poultry Science. Vol. 76, pp: 1698-1701.
23
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه انگل های خونی در قورباغه مردابی Pelophylax ridibundus در شمال ایران
بی دمان گونه هایی از دوزیستان نیمه آبزی هستند که انگل های خونی مختلفی را متحمل می شوند. در این مطالعه در مجموع 66 قورباغه مردابی بالغ از شمال ایران بین اپریل و جولای سال 2017 به منظور بررسی فون انگل های خونی در آن ها گرفته شد. نمونه های خون با توجه به اندازه قورباغه از ورید صورت یا قلب گرفته شد. اسمیرهای خونی خشک شدند، با متانول فیکس شده و توسط گیمسا رنگ آمیزی شدند. نمونه ها توسط میکروسکوپ نوری با استفاده از بزرگ نمایی 100 و روغن ایمرسیون به منظور جستجوی انگل های خونی مورد آزمایش قرار گرفتند. فون انگل های خونی شامل ریکتزیاها و هموگری گارینی های داخل گلبول قرمز و میکروفیلاریا و اشکال مختلف تریپانوزوم در خارج گلبول قرمز خون مشاهده شد. این اولین مطالعه جامع مورفولوژیکی روی فون انگل های خونی قورباغه مردابی در ایران است، مطالعه ای که انتظار می رود استفاده از آنالیزهای مولکولی به منظور شناخت بهتر این انگل های خونی، ناقل های احتمالی و دینامیک سیکل زندگی آن ها را توسعه دهد.
http://www.aejournal.ir/article_91117_6d7229fdafdca9044c185f0dd14957c7.pdf
2019-04-21
145
150
قورباغه مردابی
انگل خونی
تریپانوزوم
هموگری گارین
فریبا
رجبی
tm.rajaby@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه گیلان، رشت، ایران
AUTHOR
حسین
جوانبخت
hjavanbakht@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه گیلان، رشت، ایران
LEAD_AUTHOR
Baloch, M. and kammei, H., 1385. Amphibian Iran, Tehran University Press. pp: 711-712.
1
Barta, J.R.; Boulard, Y. and Desser, S.S., 1989. Blood parasites of Ranaesculenta from Corsica: Comparison of its parasites withthose of eastern North American ranids in the context ofhost phylogeny. Transactions of the AmericanMicroscopical Society. Vol. 108, pp: 6-20.
2
Berger, L.; Speare, R.; Daszak, P.; Green, D.E.; Cunningham, A.A.; Goggin, C.L.; Slocombe, R.; Ragan, M.A.; Hyatt, A.D.; McDonald, K.R.; Hines, H.B.; Lips, D.R.; Marantelli, G. and Parkes, H., 1998. Chytridiomycosis causes amphibian mortality associated with population declines in the rain forests of Australia and Central. Proceedings of the National Academy of Sciences USA. Vol. 95, pp: 9031-9036.
3
Bernal, X.E. and Pinto, C.M., 2016. Sexual differences in prevalence of a new species of trypanosome infecting túngara frogs. International Journal for Parasitology: Parasites and Wildlife. Vol. 5, pp: 40-47.
4
Daszak, p., 2000. Emerging infection diseases of wildlife: threats to biodiversity and human health. science. Vol. 287, pp: 1756-1756.
5
Desser, S.S. and Barta. J.R., 1984. An intraerythrocytic virus and rickettsia of frogs from Algonquin Park, Ontario. Canadian Journal of Zoology. Vol. 62, pp:1521-1524.
6
Desser, S.S., 1987. Aegyptianella ranarum sp. n. (Rickettsiales, Anaplasmataceae): ultrastructure and prevalence in frogs from Ontario. Journal of Wildlife and Disease. Vol. 23, pp: 52-59.
7
Desser, S.S.; Hong, H. and Martin D.S., 1995. The life history, ultrastructure and experimental transmission of Hepatozoon catesbianae n. comb., an apicomplexan parasite of the bullfrog, Rana catesbeiana and the mosquito, Culex territans in Algonquin Park, Ontario. Journalof Parasitology. Vol. 81, pp:212-222.
8
Desser, S.S., 2001. The blood parasites of anurans from Costa Rica with reflections on the taxonomy of their trypanosomes. Journal of Parasitology. Vol. 87, pp: 152-160.
9
Diamond, L.S., 1965. A study of the morphology, biology and taxonomy of the trypanosomes of Anura. Wildlife Disease. Vol. 44, pp: 1-85.
10
Dodd, C.K.J., 2013. Frogs of the United States and Canada. 2 Volumes. Johns Hopkins University Press, Baltimore. 962 p.
11
Dvorakova, N.; Kvicerova, J.; Papousek, I.; Javanbakht, H.; Tiar, G.; Kami, H.G. and Siroky, P., 2013. Haemogregarines from western Palaearctic freshwater turtles (genera Emys, Mauremys) are conspecific with Haemogregarina stepanowi Danilewsky, 1885. Parasitology. Vol. 141, pp: 522-530.
12
Eisen, R.J., 2001. Absence of measurable malaria-induced mortality in western fence lizards (Sceloporus occidentalis) in nature: a 4- year study of annual and over-winter mortality. Oecologia. Vol. 127, pp: 586-589.
13
Harrus, S. and Baneth, G., 2005. Drivers for the emergence and re-emergence of vector-borne protozoal and bacterial diseases. International Journal of Parasitology. Vol. 35, No. 11-12, pp: 1309-1318.
14
Javanbakht, H.; Kvicerov, Y.; Dvorakova, N.; Mikulıcek, P.; Sharifi, M.; Kautman, M.; Marsıkov, p. and Siroky, P., 2015a. Phylogeny, Diversity, Distribution, and Host Specificity of Haemoproteus spp. (Apicomplexa: Haemosporida: Haemoproteidae) of Palaearctic Tortoises. Journal of Eukaryotic Microbiology. Vol. 62, No. 5,
15
pp: 670-678.
16
Javanbakht, H.; Široký, P.; Mikulíček, P. and Sharifi, M., 2015b. Distribution and abundance of Hemolivia mauritanica (Apicomplexa: Haemogregarinidae) and its vector Hyalomma aegyptiumin tortoises of Iran. Biologia. Vol. 70, No. 2, pp: 229-234.
17
Kazemi, S.M.; Rastegar-Pouyani, E.; Shafiei Darabi, S.A.; Ebrahim Tehrani, M.; Hosseinzadeh, M.S.; Mashayekhi, M. and Mobaraki, A., 2015. Annotated checklist of amphibians and reptiles of Qom Province, central Iran. Iranian Journal of Animal Biosystematics. Vol. 77, No. 7, pp: 42-27.
18
Kiesecker, J.M.; Blaustin, A.R. and Belden, L.K., 2001. Complex causes of amphibian population declines. Nature. Vol. 410, pp: 681-684.
19
Kim, B.; Smith, T.G. and Desser, S.S., 1998. The life history and host specificity of Hepatozoon clamatae (Apicomplexa: Adeleorina) and ITS-1 nucleotide sequence variation of Hepatozoon species of frogs and mosquitoes from Ontario. Journal of Parasitology. Vol. 84, pp: 789-797.
20
Knapp, R.A. and Matthews, K.R., 2000. Non-native fish introductions and the decline of the mountain yellow-legged frog from within protected areas. Conservation Biology. Vol. 14, pp: 428-438.
21
Lehmann, D.L., 1959a. The description of Haemogregarina boyli n. sp. from the yellow-legged frog, Rana b. boyli. Journal of Parasitology. Vol. 45, pp: 198-203.
22
Lehmann, D.L., 1959b. Karyolysus sonomae n. sp., a blood parasite from the California yellow-legged frog, Rana boyli boyli. Proceedingsof the American PhilosophicalSociety. Vol. 103, pp: 545-547.
23
Lehmann, D.L., 1959c. Trypanosoma boyli n. sp. from the California yellow-legged frog, Rana b. boyli. Transactions of the American Microscopical Society. Vol. 78, pp: 370-373.
24
Lehmann, D.L., 1960. Haemogregarina aurora n. sp. from Rana aurora.Proceedings of the American Philosophical Society. Vol. 104, pp: 202-204.
25
Medrano-Tupiza, E.; Morales-Arciniega, S.; Santander Parra, S.; Núñez-Naranjo, L. and Puga-Torres, B., 2017. Absence of Hemoparasites in Wildlife Snakes, Located in the Ecological Reserves Cota 70, Cotacachi-Cayapas and Sumaco-Napo-Galeras in Ecuador. Research in Zoology. Vol. 7, No. 1, pp: 7-10.
26
Mohammadi, Z.; Khajeh, A.; Ghorbani, F. and Kami, H.G., 2015. A biosystematic study of new records of the marsh frog Pelophylax ridibundus (Pallas, 7117) (Amphibia: Ranidae) from the southeast of Iran. Journal of Asia-Pacific Biodiversity. Vol. 1, No. 4, pp: 711-714.
27
Nasiri, V.; Mobedi, I.; Dalimi, A.; Zare Mirakabadi, A.; Ghaffarifar, F.; Teymurzadeh, S.; Karimi, G.; Abdoli, A. and Paykari, H., 2014. A description of parasites from Iranian snakes. Experimental Parasitology. Vol. 147, pp: 7-15.
28
Noden, B.H.; Coburn, L.; Wright, R. and Bradley, K., 2015. Updated distribution of Aedes albopictus in Oklahoma, USA, and implications for arbovirus transmission.Journal of the American Mosquito Control Association. Vol. 31, pp: 93-96.
29
Pechmann, J.H.K.; Scott, D.E.; Semlitsch, R.D.; Caldwell, J.P.; Vitt, L.J. and Gibbons, J.W., 1991. Declining amphibian populations: The problem of separating human impact from natural fluctuations Science. Vol. 253, pp: 892- 895.
30
Rajabi, F.; Javanbakht, H. and Sajjadi, S.S., 2017. A preliminary study of haemoparasites in marsh frogs, Pelophylax ridibundus (Ranidae) from Iran. Journal of Entomology and Zoological Studies. Vol. 5, No. 4,
31
pp: 1314-1317.
32
Ramos, B. and Urdaneta-Morales, S., 1977. Hematophagous insects as vectors for frog trypanosomes. Revista de Biologica Tropical. Vol. 25, pp: 209-217.
33
Sajjadi, S. and Javanbakht, H., 2017. Study of Blood Parasites of the Three Snake Species in Iran: Natrix natrix, Natrix tessellata and Zamenis longissimus (Colubridae). Journal of Genetic Resource. Vol. 1, pp: 1-6.
34
Shannon, R.P., 2013. Amphibian blood parasites and their potential vectors in the great plains of the united states. MSC thesis. Oklahoma State University.
35
Smallridge, C.J. and Bull, C.M., 2000. Prevalence and intensity of the blood parasite Hemolivia mariae in a field population of the skink Tiquila rugosa. Parasitology Research. Vol. 86, pp: 655-660.
36
Stenberg, P.L. and Bowerman, W.J., 2008. Hemoparasites in Oregon Spotted Frogs (Rana pretiosa) from Central Oregon, USA. Journal of Wildlife and Disease. Vol. 44, No. 2, pp: 464-468.
37
Vaissi, S.; Parto, P.; Haghighi, Z.M. and Sharifi, M., 2017. Intraerythrocytic rickettsial inclusions in endangered Kaiser ’s mountain newt, Neurergus kaiseri (Caudata: Salamandridae. Journal of Appleid Animal Research. Vol. 45, No. 1, pp: 505-507.
38
Zickus, T., 2002. The first data on the fauna and distribution of blood barasites of amphibians in Lithuania. Acta Zoologica Lituanica. Vol. 12, No. 2, pp: 197-202.
39
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی مورفولوژیکی آلودگی های کرمی حفره شکمی، دستگاه گوارش و چشم ماهی بنی (Mesopotamichthys sharpeyi) و شیربت (Barbus grypus) تالاب شادگان استان خوزستان
تالاب شادگان از مهم ترین منابع طبیعی خوزستان از نظر غنای گونه ای می باشد. این تالاب زیستگاه مهم انواع گونههای آبزی (گونههای آب شیرین و گونههای آب شور) است. ماهی بنی و ماهی شیربت از جمله گونههای با ارزش اقتصادی و مقاوم نسبت به شرایط نامساعد محیطی هستند، به طوری که در آبهای راکد و گرم که میزان اکسیژن آنها کم است به راحتی زندگی میکنند. این مطالعه به منظور بررسی آلودگی های کرمی حفره شکمی ، دستگاه گوارش و چشم در ماهیان مذکور در تالاب شادگان صورت گرفت. در این تحقیق تعداد 100 عدد ماهی بنی و 100 عدد ماهی شیربت صید شده از تالاب شادگان بدون درنظر گرفتن فصل خاصی و به صورت تصادفی در چند مرحله (مهر 95 تا اردیبهشت 96) تهیه گردید و سپس ماهیان به آزمایشگاه بخش آبزیان دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز منتقل شدند. پس از بررسی این ماهیان، انگل های جدا شده در الکل 70 درصد تثبیت شدند و سپس با استفاده از کلیدهای شناسایی تشخیص داده شدند. بر طبق نتایج، انگل های شناسایی شده در این بررسی شامل: دیپلوستوموم اسپاته سه اوم از چشم، کنتراسکوم، آنیزاکیس، ترماتد وارلاکرپتوترما، نئواکینورینکوس، کاویا و بوتریوسفالوس از روده ماهیان بوده است. در این مطالعه تنوع انگلهای کرمی در ماهی شیربت بالاتر و به جز در مورد نئواکینورینکوس شدت آلودگی نسبتا پایین است. بر اساس نتایج حاصله بیش ترین آلودگی کرمی آلودگی به انگل دیپلوستوموم اسپاته سه اوم (31%) بوده است.
http://www.aejournal.ir/article_88837_fbc1728ab1fe3152cbd2c86b63d33734.pdf
2019-04-21
151
160
نئواکینورینکوس
دیپلوستوموم اسپاتا سه اوم
آنیزاکیس
کنتراسکوم
فروغ
محمدی
f-mohammadi@phdstu.scu.ac.ir
1
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
مهرزاد
مصباح
m.mesbah@scu.ac.ir
2
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
محمدحسین
راضی جلالی
m.h.jalali@scu.ac.ir
3
گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
عباس
جلودار
jolodara@yahoo.com
4
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
پیغان، ر.؛ نبوی، ل. و حسینی، م.ر.، 1380. بررسی آلودگی کرمی روده سیاه ماهی، ماهی برزم لب پهن و ماهی شیربت رودخانه های اطراف خرم آباد. مجله دامپزشکی ایران (دانشگاه شهید چمران اهواز). شماره 7، صفحات 55 تا 66.
1
پیغان، ر.، 1380. انگل ها و بیماری های انگلی ماهی. چاپ اول، انتشارات نوربخش، تهران. صفحات 37 تا 76 و 101 تا 120.
2
جلالی جعفری، ب.، 1377. انگل ها و بیماری های انگلی ماهیان آب شیرین ایران. انتشارات معاونت تکثیر و پرورش آبزیان، اداره کل آموزش و ترویج، شرکت سهامی شیلات ایران. چاپ اول. صفحات 237 تا 302.
3
حمیدیان، غ.،1382. مطالعه ساختار بافت شناسی و هیستومتریک پوست نواحی مختلف ماهی بنی (Barbus sharpeyi). پایان نامه دکتری عمومی دامپزشکی دانشگاه شهید چمران، اهواز. شماره 591.
4
دادار، م.؛ پیغان، ر. و راضی جلالی، م.ح.، 1390. بررسی آلودگی ماهیان رودخانه زهره استان خوزستان به انگل های پریاخته. مجله دامپزشکی ایران. دوره 7، شماره 3، صفحات 30 تا 42.
5
راهدار، م.؛ مصباح، م .و وزیریان، ب.، 1391. بررسی انگل های داخلی و خارجی زئونوز ماهی بنی شادگان و سوسنگرد در سال 1386. مجله علوم بهداشتی جندی شاپور. سال 4 ، شماره 1، صفحات 49 تا 55.
6
سیدمرتضایی، س.ر. و عباسی، س.، 1375. مطالعه طرح جامع هور شادگان، فاز انگل شناسی. مرکز تحقیقات شیلاتی خوزستان. 74 صفحات.
7
سیدمرتضایی، س.ر.؛ پازوکی، ج و معصومیان، م.، 1386. انگل های نماتود جدا شده از چند گونه ماهیان آب شیرین استان خوزستان. مجله پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. شماره 77، صفحات 2 تا 20.
8
عباسی،س.، 1373. بررسی ضایعات آبشش ها و ارتباط آن ها با فاکتورهای فیزیکو شیمیایی باکتریایی انگلی تغذیه ای کپورماهیان پرورشی حوضه کارون . انتشارات موسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران استان خوزستان. صفحات 34 تا 37.
9
مخیر، ب.، 1381. بیماری های ماهیان پرورشی. انتشارات دانشگاه تهران. چاپ چهارم. شماره 1869، صفحات 398 تا 401.
10
مصباح، م.، 1383. شناسایی و اکواپیدمیولوژی انگل های ماهی بنی در تالاب شادگان استان خوزستان. پایان نامه جهت دریافت درجه دکترای تخصصی رشته بهداشت و بیماری های آبزیان از دانشگاه تهران. 254 صفحه.
11
مغینمی، ر.، 1374. گزارش نهایی مطالعه آلودگی انگلی در ماهیان بومی تالاب هورالعظیم دشت آزادگان. مرکز تحقیقات شیلات خوزستان. موسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران. 107 صفحه.
12
Akbarzadeh, A., 2008. Investigating the parasites of the gastrointestinal tract, muscle, and eyes of Barbus grypus from the end of the Karkheh River. D.V.M Thesis. Shahid chamran University of Ahvaz. 92 p.
13
Amlacher, E., 1970. Textbook of fish diseases (Engl. Transl.). T. F. H.Publ., Jersey City. 302 p.
14
Anderson, R.; Willmott, S.; and Chabaud, A.G., 1976. CIH keys to the nematode parasites of vertebrates. CABI Publication. 462 p.
15
Dadar, M.; Peyghan, R. and Razi Jalali, M.H., 2011. Study on metazoan parasite fauna in some of fishes Zohreh River. Iranian Veterinary Journal. Vol. 7, No. 3, pp: 30-42.
16
Ebrahimzadeh, A. and Kalani, R., 1976. Investigating gut and muscle parasites of Karoon ariver fish. Jondishahpour university press. pp: 11-41.
17
Ebrahimzadeh, A. and Nabavi, L., 1975. Investigation of gastrointestinal tract and muscle worms in Khuzestan and its relation with human contamination. Jondishahpour university press. pp: 5-78.
18
Eslami, A., 1997. Veterinary Helmithology. Vol. 3, Nematode and Acanthocephala. Tehran Univ. press. pp: 150-151.
19
Farahnak, A.; Mobedi, I. and Tabibi, R., 2002. Fish Anisakidae Helminthes in Khuzestan Province, South West of Iran, Iranian Journal of Public Health. Vol. 31, No. 3, pp: 129-132.
20
Furhan, M., 2002. A second collection of fish parasites and fungi from the lower reaches of Diyala River, mid Iraq. The Veterinary. Vol. 12, No. 1, pp: 24-32.
21
General Directorate of Environmental protection of Khuzestan. 1998. Limnological study and ecological balance of intenal waters (shadegan wetland), preliminary phase. Vol. 2, No. 2.
22
Gibson, D.I.; Jones, A. and Bray, R.A., 2002. International and The Natural History Museum, London. Key to the Trematoda, Vol. 1.
23
Hamidian, Gh., 2003. histological and histometric study of different areas in skin of barbus sharpeii. D.V.M Thesis of Shahid Chamran University of Ahvaz. No. 591.
24
Hickman, C.P.; Roberts L.S. and Hikman, M.F., 1983. Integratea Principles of Zoology.8th ed. Mosby College Publishing. pp: 253-255.
25
Jalali Jafari, B., 1998. Parasites and Parasitic Disease of fresh water. Iran Fisheries Company. Press. Vol. 1, pp: 237-302.
26
Jalali, B.; Mahbobi Soofiani, N.; Asadollah, S. and Barzegar, M., 2012. An investigation on fish parasites in Hanna Wetland, Semirom, Isfahan Province. Iranian Scientific Fisheries Journal. Vol. 21, No. 1, pp: 25-38.
27
Khalil, L.F.; Jones, A. and Rodney, A.B., 1994. Keys to the Cestode Parasite of Vertebrates. CAB International. 768 p.
28
Mackiewicz, J.S., 1982. Caryophyllidea (Cestoidea): perspectives. Parasitology. No. 84, pp: 397-417.
29
Markevich A.P., 1951. The parasitic fauna of freshwater fish in the Ukrainian S.S.R. Akademiya Nauk Ukrainskoi SSR, Institut Zoologii, Kiev, Translated from Russian by N. Rafael, Israel Program for Scientific Translations. Office of Technical Series, U.S. Department of Commerce, Washington. pp: 1-367.
30
Mesbah, M., 2004. Determination and Ecoepidemiological study of the parasite of Barbus Sharpeii in Shadegan marsh of Khouzestan Province. Thesis submitted as fulfillment of requirement for the degree of Doctorate in Aquatic Animal Heaith(DVSc), Tehran University. 254 p.
31
Mogheinami, S.R., 1995. Final Report of Parasitic Pollution Study Projrct in indigenous fishes of Hoorolazim Wetland, Iranian Fisheries Science Research Institue.
32
Mokhayer, B.; Mesbah, M.; Peyghan, R. and Jalali, B., 2006. Study of monogenetic trematodes infestation in Benni, Barbus sharpeyi from Shadegan marsh and mode of their attachment to gills. Scientific-Research Iranian Veterinary Journal. Vol. 2, No. 2, pp: 48-57.
33
Mokhayer, B., 1976. The treatment of Bothriocephalosis in grass carp. Riv. It. Piscic. Ittiop. A. XI. No. 4, Vol. 119-121.
34
Mokhayer, B., 1989. Fish diplostomatosis in Iran. Journal of veterinary Faculty, university of Tehran. Vol. 44, No. 2, pp: 11-18.
35
Mokhayer, B., 1999. Parasites of juvenile storgeons from southern Caspian Sea 5th international symposium on fish parasites, 9-13 Agust. 1999. Ceske Budejovice, Czech Republic.
36
Mokhayer, B., 2002. Diseqses of cultivated fishes, Tehran Univ. Press. Vol. 4, No. 1869, pp: 398-401.
37
Pazooki, J. and Molnar, K., 1998. Philometra karuensis sp. N. (Nematoda; Philometridae) from Barbus sharpeyi in freshwater of southwest Iran,Acta Veterinarica. Hungarica. pp: 465-471.
38
Pazooki, J., 1996. A faunistical survey and histopathological studies on freshwater fish nematods in Iran and hungary. Ph.D. Thesis, Vet. Med. Res. Ins. Hungary Acad. Of sciences, Hungary.
39
Pazooki, J.; Masoumian, M. and Seyed Mortezaei, S.R., 2012. Survey on some Endometazoan Parasites from Barbus spp. Khouzestan Province, Iran. Pajouhesh and Sazandegi. No. 94, pp: 36-44.
40
Peyghan, R., 1380.Parasites and Parasitic Disease of Fish. Vol. 1. Noorbakhsh. Press. pp: 37-86, 101-120.
41
Peyghan, R. and Hoghoghi Rod, N., 2004. Determination of parasitic helminthes in Persian Gulf grouper, (Epinephelus coioides), and silver pomfret, (Stromateus cinereus). Pajouhesh & Sazandegi. No. 4, pp: 62, 49-55.
42
Peyghan, R.; Nabavi, L. and Hosseini, M.R., 2001. The prevalence of helminth parasites in intestines of Capoeta trutta, Barbus arabus, Barbulus and Barbus grypus in Khoramabad Rivers. Iranian Veterinary Journal. Vol. 7, pp: 55-66.
43
Rahdar, M.; Mesbah, M.; Vazirian, Z., 2012. Detection of internal and external zoonosis parasites in Barbus sharpeyi in Shadegan and sosangerd city during 2007. Jundishapur Journal of Health Sciences. Vol. 4, No. 1, pp: 49-55.
44
Seyed Mortezaei, S.R.; Pazooki, J.; Masoumian, M., 2007. Nematodes from fresh water fishes of Khouzestan province. Pajouhesh & Sazandegi. No. 77, pp: 2-10.
45
Valero, A.; Paniagua, M.I.; Hierro, I.; Díaz, V.; Valderrama, M.J. and Benítez, R., 2006. Anisakid parasites of two forkbeards (Phycis blennoides and Phycis phycis) from the Mediterranean coasts of Andalucía (Southern Spain). Parasitol Int. Vol. 55, No. 1, pp :1-5.
46
Williams, J.S.; Gibson, D.I. and Sadeghian, A., 1980. Some helminth-parasites of Iranian freshwater fishes. Journal of Natural History. No .14, pp: 685-699.
47
Woo, P.T.K., 1995. Fish diseases and disorders, Volume 1 Protozoan and Metazoan infections. CAB international. U.K. 930 p.
48
Yamaguti, S., 1961. The Nematodes of Vertebrate. Part Ι, ΙΙ. Systema Helminthum ΙΙΙ. Inrerscience publisher, New York, London. pp:12-61.
49
Yeomans, W.E.; Chubb, J.C. and Sweeting, R.A., 1997. Khawia sinensis (Cestoda: Caryophyllidea); an indicator of legislative failure to protect freshwater habitats in the British Isles. Journal of Fish Biology. Vol. 51, No. 5, pp: 880-885.
50
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی عادات غذائی گیش ماهی پوزه دراز (Carangoides chrysophrys (cuvier,1833 در آبهای استان هرمزگان
گیش ماهی پوزه دراز از مهم ترین گونه های خانواده گیش ماهیان (Carangidae) بوده و از ماهیان مهم شیلاتی محسوب می شود. در این پژوهش 440 قطعه گیش پوزه دراز توسط تور ترال صید و از تخلیهگاههای صیادی که به روشهای متفاوتی اقدام به صید مینمایند از بهار 95 تا زمستان 95 در استان هرمزگان نمونهبرداری شد. نمونه های ماهیان پس از بررسی اولیه و زیستسنجی فریز شده و به آزمایشگاه منتقل شدند. در ابتدای امر نمونه ها کالبدشکافی شده و وزن معده، نوع محتویات معده، وزن محتویات معده و وزن کبد مورد بررسی قرار گرفت. نتایج به دست آمده از بررسیها برروی گیش پوزه دراز نشان داد که ارجحیت غذایی در جنس نر و ماده برای ماهی به عنوان غذای اصلی به ترتیب 76/6 درصد و 18/1 درصد، سخت پوستان به عنوان غذای فرعی به ترتیب 11/1 و 17/4 درصد و نرم تنان 4/8 درصد و 4/3 درصد است. در بین نمونههای غذایی ماهی به دست آمده از معده گیش پوزه دراز، موتو ماهیان 56/6 درصد، انواع کالرماهیان 19/62 درصد، دمریش ماهیان 5/6 درصد، بز ماهیان 4/67 درصد و مجموع سایر ماهیان 13/51 درصد ترکیب غذایی این گونه تشکیل می دادند. در بین سخت پوستان، میگو 63/15 درصد و خرچنگ 36/85 درصد در محتویات معده گیش پوزه دراز یافت گردید. بررسی ها و تحلیل های آماری تفاوت معنی داری را بین ارجحیت غذایی جنس نر و ماده نشان نداد (0/05≤P). میانگین شاخص خالی بودن معده 69/67 درصد به دست آمد گونه گیش پوزه دراز یک گونه گوشت خوار است و نتایج تحقیق نشان می دهد که غذای اصلی آن در منطقه مورد بررسی شامل ماهیان و سخت پوستان میباشد. این گونه جز ماهیان نسبتاً کم غذا محسوب می شود و بیش ترین درصد معده های خالی در فصول تابستان و زمستان به دست آمد. از آن جائی که در آبزی پروری غذا بخش عمده ای از هزینه ها را به خود اختصاص می دهد، نتایج حاصل از این پژوهش نشان داد این گونه از نظر اقتصادی پتانسیل معرفی به این صنعت را دارا می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_88838_bd86b103f435fd89fec8f5fb117d17c9.pdf
2019-04-21
161
166
ماهی گیش پوزه دراز
رژیم غذایی
آب های استان هرمزگان
خلیج فارس
فریبرز
هاشمی پور
fariborzhashemipour@gmail.com
1
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران
AUTHOR
فرهاد
کیمرام
farhadkaymaram@gmail.com
2
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
احسان
کامرانی
eza47@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
شهلا
جمیلی
shahlajamili45@yahoo.com
4
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
احسان
رمضانی فرد
ramezanifard@srbiau.ac.ir
5
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران
AUTHOR
ستاری،م.؛1383. ماهی شناسی 2 (سیستماتیک). انتشارات حق شناس. چاپ اول. 518 صفحه.
1
صادقی، م.س.؛ ابدالی، س. و معنوی، ا.، 1393. بررسی رژیم غذایی گیش خال سفید Carangoidesmalabaricus در آبهای استان هرمزگان (محدوده خلیج فارس). پژوهشهای علوم و فنون دریایی. سال 9، شماره 1، صفحات 69 تا 78.
2
صادقی، س.، 1380. ویژگی های زیستی و ریخت شناسی ماهیان جنوب ایران (خلیج فارس و دریای عمان). انتشارات نقش مهر. تهران. ایران.
3
دوستدار، م.؛ دریانبرد، غ.؛ وثوقی، غ.؛ کاظمیان، م. و رحمتی، ر.؛ 1388. بررسی رژیم غذایی طبیعی ماهی گیش کاذب در آب های ساحلی دریای عمان (Lactarius lactarius). مجله دامپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی. شماره 12، صفحات 32 تا 37.
4
کمالی، ع.؛ دهقانی، ر. و حسینی، ع.، 1394. رابطه بین طول و وزن و تعیین ضریب چاقی (K) ماهی گیش پوزه دراز Carangoides chrysophrys در آبهای استان هرمزگان. فصلنامه آبزیان و شیلات. شماره 23، صفحات 65 تا 73.
5
کمالی، ع.؛ دهقانی، ر.؛ درویشی، م. و حسینی، ع.؛ 1395. بررسی تغذیه طبیعی ماهی گیش پوزه دراز Carangoides chrysophrys آب های استان هرمزگان. چهارمین همایش ملی و شیلات آبزیان. 4 اسفند 1395.
6
ولی نسب، ت.؛ دریانبرد، غ. و دهقانی، ر.، 1382. پایش ذخایر کفزیان به روش مساحت جاروب شده در آب های دریای عمان (1381). موسسه تحقیقات شیلات ایران.
7
Alegria-Hernandez, V., 1984. Some aspect of horse mackerel (Trachurustrachurus L.) biology in the middle Adriatic. FAO Fishreport. Vol. 290, pp: 123-125.
8
Al-Rasady, I.; Govender, A. and Al-Jufaili, S.M., 2012. Reproductive biology of longnose trevally (Carangoides chrysophrys) in the Arabian Sea, Oman. Environmental biology of fishes. Vol. 93, No. 2, pp: 177-184.
9
Berry, F.H.; Smith-Vaniz, W.F. and Moberly, J.B., 1981. Identification of trevallys or crevalles (genus Caranx sp.) of the Indian and Pacific Oceans. International Game Fish Association, Fort Lauderdale, FL. In Wetherbee, B. M, Holland, K. N., Meyer, C. G., Lowe, C. G., 2004. Use of marine reserve in Kaneohe Bay, Hawaii by the gian trevally, CaranxIgnobilis. Fisheries Research. Vol. 67, pp: 253-263.
10
Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology. South Asian Publishers PVt Ltd, India. 62 P.
11
Carpenter, K.E.; Krupp, F.; Jones, D.A. and Zajons, U., 1997. FAO species identification guide for fishery purpose. The living marine Resources of Kuwait, Eastern Saudi Arabia. Bahrain. Qatar and the United Arab Emirates. Rome, FAO. 293 p.
12
Euzen, O., 1987. Food habits and diet composition of some fish of Kuwait. Bulletin Marine Science. Vol. 9, pp: 65-85.
13
Kulbicki1, M.; Bozec, Y.; Labrosse, P.; Letourneur, Y.; Mou-Thum, G. and Wantiez, L., 2005. Diet composition of carnivorous fishes from coral reef lagoons. Vol. 18, pp: 231-250.
14
Mohsin, A.K.M. And Ambak, M.A., 1996. Marine fishes and fisheries of Malaysia and neighbouring countries. University Pertanian Malaysia Press, Malaysia. 744 p.
15
Neilson, J.D. and Perry, R.I., 1990. Diel verticalmigrations of marine fishes: an obligatefacultative process? Advances in MarineBiology. Vol. 26, pp: 115-168.
16
Prejs, A. and Colomine, G., 1981. Métodos para el estudio de los alimentos y lasrelacionestróficas de los peces. Caracas: U. Central de Venezuela/U. de Varsovia.
17
Sley, A.; Jarboui, O.; Ghorbel, M. and Bouain, A., 2008. Diet composition and food habits of Caranx rhonchus (Carangidae) from the Gulf of Gabes (central Mediterranean). Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. Vol. 88, No. 4, pp: 831-836.
18
Saucedo-Lozano, M.; Bernal-Ornelas, H.; Espino-Barr, E.; Garcia-Boa, A.; Cabral-Solís, G. and Puente-Gómez, M., 2012. Feeding habits of the Green jack (Caranx caballus Günther, 1868) on the Coast ofManzanillo. The Open Marine Biology Journal. Vol. 6, No. 1, pp: 28-37.
19
Sivakami, S., 1995. Fishery and biology of theCarangidae off Cochin. Journal of the Marine Biological Association of India. Vol. 37, No. 1-2, pp: 237-248.
20
ORIGINAL_ARTICLE
اثر غلظت های تحت کشنده اندوسولفان بر فاکتورهای خونی و ایمنی موکوس ماهی کلمه (Rutilus caspicus)
با توجه به اهمیت ماهی کلمه خزری به عنوان یکی از گونه های ارزشمند دریای خزر و ورود سموم کشاورزی به این دریا هدف از این تحقیق بررسی اثرات تحت کشنده سمیت اندوسولفان بر فاکتورهای ایمنی موکوس و فاکتورهای خونی ماهی کلمه می باشد. پس از تعیین میزان 50LC برای این گونه تعداد 20 عدد ماهی با میانگین وزنی 2/32±18/46 گرم در هر مخزن در مجاورت 10 درصد و 20 درصد سم اندوسولفان به مدت 21 روز قرار گرفتند. نمونه برداری از موکوس و خون در روز 1، 7، 14 و 21 انجام شد. نتایج نشان داد که میزان پروتئین کل و ایمنوگلوبین در تیمار 20 درصد پس از 21 روز قرارگیری در معرض سم اندوسولفان بالاترین میزان را داشت که اختلاف معنی داری با شاهد داشت (0/05>P). با افزایش مدت زمان قرارگیری در معرض سم و غلظت سم میزان هموگلوبین، هماتوکریت و گلبول قرمز کاهش یافت و بیش ترین میزان این فاکتورها در گروه شاهد بود که اختلاف معنی داری با سایر تیمارها داشت (0/05>P). تعداد گلبول های سفید با افزایش غلظت سم و زمان افزایش یافت. قرارگیری در معرض سم اندوسولفان می تواند اثرات تحریکی برسیستم ایمنی غیراختصاصی ماهی کلمه داشته باشد.
http://www.aejournal.ir/article_89332_a4af79e100a01a2b93106f878df3b4d6.pdf
2019-04-21
167
174
اندوسولفان
فاکتورهای خونی و ایمنی موکوس
محسن
تجری
tajari@bandargaziau.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد علوم و تحقیقات تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
ابولقاسم
کمالی
kamali.abolghasem@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد علوم و تحقیقات تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
هومن
رجبی اسلامی
houman.rajabi@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد علوم و تحقیقات تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
حامد
پاک نژاد
hkolangi@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
بهادر، ع. و بهادر، ف.،1386. میکروب شناسی پزشکی. چاپ اول. تهران. نشر خسروی. 272 صفحه.
1
کردوانی، پ.،1374 .. زئوهیدروبیولوژی. انتشارات دانشگاه تهران. 77 صفحه.
2
شریفیان، م.، 1392. تاثیر سطوح متفاوت ویتامین A بر خصوصیات ضدباکتریایی موکوس اپیدرم ماهی کلمه (Rutilus caspicus). مجله علوم و فنون شیلات. دوره 2، شماره 59، صفحات 23 تا 34.
3
هدایتی، ع.؛ قربانی، ر.؛ باقری، ط.؛ احمدوند، ش. و جهانبخشی، ع.، 1392. بررسی اثرات سمیت کشنده نانواکسید روی (ZnO NPs)، نانو اکسید مس (CuO NPs) و نانودیاکسید تیتانیوم (TiO2 NPs) و بررسی اثرات سمیت تحت کشنده آن ها بر فاکتورهای خون و بافت آبشش ماهی قرمز (Carassius auratus)، کپور معمولی (Cyprinuscarpio) و کلمه (Rutilusrutilus). دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان معاونت پژوهشی و فناوری دانشکده شیلات و محیط زیست. گروه شیلات تاریخ تصویب 1391. 29 صفحه.
4
Alwan, S.F.; Hadi, A.A. and Shok, A.E., 2009. Alterations in hematological parameters of fresh Water Fish, Tilapia zillii, exposed to aluminum. Benghazi Uni. Press. J. Sci. Appl. Vol. 3, pp: 12-19.
5
Edsall, C., 1999. A blood chemisteryprofile for lake trout. J.Aq. Animal Health; 11;.81-86. Federal Insecticide (USA). Fungicide and rodenticide act. Environ Protect. Vol. 23, pp: 59-61.
6
Hedayati, A. and Safahieh, A., 2011. Serum hormone and biochemical activity as biomarkers of mercury pollution in yellowfin exposed to sublethal concentration of endosulfan during metamorphosis. Comparative Biochemistry and physiology. Vol. 8, pp: 300-308.
7
Keyvanshokooh, S. and Kalbassi, M.R., 2006. Genetic variation of Rutilus rutilus caspicus (jakowlew 1870) populations in Iran based on random amplified polymorphic DNA markers: a preliminary study. Aquaculture Research. Vol. 37, pp: 1437-1440.
8
Khattak, I.U.D. and Hafeez, M.A., 1996. Effect of malathionon blood parameters of fish, Cyprinion watsoni pak. J. Zool. Vol. 28, pp: 45-49.
9
Krylov, O.N., 1998. Manual for the prevention and diagnostics of the poisoning of the fishes by harmful substance. Moscow: Tsniiterkh.Vol. 12, pp: 51-53.
10
Martha, C.; Tellez, B.; Anne, S.; Josefina, C. and Solis, G., 2010. Endosulfan increases seric interleukin-2 like (IL-2L) factor andimmunoglobulin M (IgM) of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) challenged with Aeromona hydrophila. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 28, pp: 401-405.
11
Milligan, C.L. and Wood, C.M., 1982. Disturbances in haematology, fluid volume distribution and circulatory function associated with low environmental ph in the rainbow trout, Salmo gairdneri. The Journal of Experimental Biology. Vol. 99, pp: 397-415.
12
Riaz, M.; Rabia, J.; Saman, I.; Rasheeda, A.; Amjada, M. and Iqbala, F., 2018. Effect of Diafenthiuron exposure under short and long term experimental conditions on hematology, serum biochemical profile and elemental composition of a non-target organism, Labeo rohita. Environmental Toxicology and Pharmacology. Vol. 62, pp: 40-45.
13
Oh, H.S.; Lee, S.K.; Kim, Y.H. and Roh, J.K., 1991. Mechanism of selective toxicity of diazinon to killifish (Oryzias latipes) and loach (Misgurnus anguillicaudatus). Aquat.Toxicol. Risk Asses. Vol. 14, pp: 343-353.
14
Pourang, N.; Tanabe, S.; Rezvani, S. and Dennis, H., 2005. Trace elements accumulation in edible tissues of five sturgeon species from the Caspian Sea. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 100, pp: 89-108.
15
Sanchez-fortun, S. and Barahona, M.V., 2005. Comparative study on the environmental risk induced by several pyrethroids inestuarine and fresh water invertebrate organisms, Chemosphere. Vol. 59, pp: 553-559.
16
Schlenk, D. and Di Giulo, R.T., 2002. Biochemical responses as indicators of aquatic ecosystem health. In Adams, S.M.(ed). Biological indicators of aquatic ecosystem stress, AFS, Bethesda. Vol. 7, pp: 14-17.
17
Siwicki, A.K. and Anderson, D.P., 1993. Nonspecific defense mechanisms assay in fish: II. Potential killing activity of neutrophils and macrophages, lysozyme activity in serum and organs and total immunoglobulin level in serum, Fish Disease Diagnosis and Prevention Methods Olsztyn, Poland. Vol. 15, pp: 105-112.
18
Suzuki, Y.; Tasumi, S.; Tsutsui, Sh.; Okamoto, M. and Suetake, H., 2003. Molecular diversity of skin mucus lectins in fish, Comprative Biochemistry and Physiology Part B. Vol. 136, pp: 723-730.
19
Svobodova, Z.; Luscova, V.; Drastichova, J.; Svoboda, M. and Zlabek, V., 2003. The effect of deltamethrin on hematological indices of common carp (Cyprinus carpio). Acta vet. Brno. Vol. 72, pp: 79-85.
20
Van-Der Geest, H.G.; Stuijfzand, S.C.; Kraak, M.H.S. and Admiraal, W., 1997. Impact of diazinon calamity in1996 on the aquatic macroinvertebrates in the river Mesue, The Netherlands, Netherland Journal of Aquatic Ecology. Vol. 30, pp: 327-330.
21
Varadarajan, R.; Jose, J.; Hari Sankar, H.S. and Philip, B., 2013. Haematological and ionic alterations in Oreochromis mossambicus (peters) induced by phenolic compounds Aqua. Biol. Fish. Vol. 1, pp: 90-96.
22
ORIGINAL_ARTICLE
آلودگی میکروپلاستیک در ماهی سفید (Rutilus frisii kutum) سواحل جنوبی دریای خزر
میکروپلاستیک در زیستگاه های دریایی در سراسر جهان وجود دارد و مطالعات آزمایشگاهی نشان میدهد که این ماده می تواند توسط ماهیان بلعیده شده و از طریق مصرف ماهی به انسان نیز منتقل گردد. با این حال داده های مربوط به فراوانی آن در دریاچه ها محدود است. هدفاز این مطالعه بررسی میزان تجمع میکروپلاستیک بر روی ماهی سفید به عنوان یک خوراک دریایی است. این مطالعه بر روی 51 قطعه ماهی سفید جمع آوری شده در فصل صید و در ماه های اسفند تا فروردین سال 1395 تا 1396 در شش ایستگاه (گمیشان، بابلسر، محمودآباد، تنکابن، چمخاله، بندرانزلی) در سواحل جنوبی دریای خزر انجام شد. نتایج نشان داد که در دستگاه گوارش 66/6% از ماهیان مورد مطالعه، میکروپلاستیک وجود داشت. به طورمیانگین هرماهی تعداد 1/47 قطعه میکروپلاستیک بلعیده بودکه بیش ترین میزان این میکروپلاستیک ها را الیاف (با 38/75%)، سپس فرگمنت ها (31/42%)، فیلم ها (30%) و دانه ها (با 11/42%) به خود اختصاص دادند. این داده ها نشان می دهد که آلودگی میکروپلاستیک در ماهی سفید دریای خزر به میزان قابل توجهی وجود دارد. مصرف این ماهی ممکن است میکروپلاستیک را به انسان انتقال دهد. نتایج این تحقیق با گزارش هایی از سایر نقاط جهان مقایسه گردید که نشان می دهد که باید مطالعه بیش تری در دریای خزر انجام پذیرد.
http://www.aejournal.ir/article_91165_0b514bc954229850330ee4be04fbd2ce.pdf
2019-04-21
175
180
آلودگی میکروپلاستیک
خوراک دریایی
ماهی سفید
دریای خزر
محمد
ذاکری
mohammad.zakeri@hotmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
آرش
اکبرزاده
akbarzadeh@alumni.ut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
ابوالفضل
ناجی
abolfazlnaji@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
رضوی صیاد ب.ع.، 1374. ماهی سفید. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 165 صفحه.
1
غنی نژاد، د.؛ مقیم، م. و عبدالملکی، ش،. 1379. ارزیابی ذخایر ماهیان استخوانی دریای خزر در سال 78-79. مرکز تحقیقات شیلات گیلان. 165صفحه.
2
Andrady, A.L., 2011. Microplastics in the marine environment. Marine pollution bulletin. Vol. 62, No. 8, pp: 1596-1605.
3
Arthur, C.; Baker, J.E. and Bamford, H.A., 2009. Proceedings of the International Research Workshop on the Occurrence, Effects, and Fate of Microplastic Marine Debris, September 9-11, 2008, University of Washington Tacoma, Tacoma, WA, USA.
4
Avio, C.G.; Gorbi, S.; Milan, M.; Benedetti, M.; Fattorini, D.; d'Errico, G.; Pauletto, M.; Bargelloni, L. and Regoli, F., 2015. Pollutants bioavailability and toxicological risk from microplastics to marine mussels. Environmental Pollution. Vol. 198, pp: 211-222.
5
Barnes, D.K.; Galgani, F.; Thompson, R.C. and Barlaz, M., 2009. Accumulation and fragmentation of plastic debris in global environments. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Biological Sciences. Vol. 364, No. 1526, pp: 1985-1998.
6
Bellas, J.; Martínez-Armental, J.; Martínez-Cámara, A.; Besada, V. and Martínez-Gómez, C., 2016. Ingestion of microplastics by demersal fish from the Spanish Atlantic and Mediterranean coasts. Marine pollution bulletin. Vol. 109, No. 1, pp: 55-60.
7
Bessa, F.; Barría, P.; Neto, J.M.; Frias, J.P.; Otero, V.; Sobral, P. and Marques, J.C., 2018. Microplastics in Juvenile Commercial Fish from an Estuarine Environment. In Proceedings of the International Conference on Microplastic Pollution in the Mediterranean Sea. pp: 131-135.
8
Boerger, C.M.; Lattin, G.L.; Moore, S.L. and Moore, C.J., 2010. Plastic ingestion by planktivorous fishes in the North Pacific Central Gyre. Marine pollution bulletin. Vol. 60, No. 12, pp: 2275-2278.
9
Bråte, I.L.N.; Eidsvoll, D.P.; Steindal, C.C. and Thomas, K.V., 2016. Plastic ingestion by Atlantic cod (Gadus morhua) from the Norwegian coast. Marine pollution bulletin. Vol. 112, No. 1, pp: 105-110.
10
Browne, M.A.; Galloway, T.S. and Thompson, R.C., 2010. Spatial patterns of plastic debris along estuarine shorelines. Environmental Science & Technology. Vol. 44, No. 9, pp: 3404-3409.
11
Claessens, M.; Van Cauwenberghe, L.; Vandegehuchte, M.B. and Janssen, C.R., 2013. New techniques for the detection of microplastics in sediments and field collected organisms. Marine pollution bulletin. Vol. 70, No. 1, pp: 227-233.
12
Cole, M.; Lindeque, P.; Halsband, C. and Galloway, T.S., 2011. Microplastics as contaminants in the marine environment: a review. Marine pollution bulletin. Vol. 62, No. 12, pp: 2588-2597.
13
Colton, J.B.; Knapp, F.D. and Burns, B.R., 1974. Plastic particles in surface waters of the northwestern Atlantic. Science. Vol. 185, No. 4150, pp: 491-497.
14
Davison, P. and Asch, R.G., 2011. Plastic ingestion by mesopelagic fishes in the North Pacific Subtropical Gyre. Marine Ecology Progress Series. Vol. 432, pp: 173-180.
15
Derraik, J.G., 2002. The pollution of the marine environment by plastic debris: a review. Marine pollution bulletin. Vol. 44, No. 9, pp: 842-852.
16
Do Sul, J.A.I. and Costa, M.F., 2014. The present and future of microplastic pollution in the marine environment. Environmental Pollution. Vol. 185, pp: 352-364.
17
Driedger, A.G., 2015. Plastic debris in the Laurentian Great Lakes: Classification, distribution and en Peters, R.; Herrera Rivera, Z.; Undas, A.; van der Lee, M.; Marvin, H.; Bouwmeester, H. and Weigel, S., 2015. Single particle ICP-MS combined with a data evaluation tool as a routine technique for the analysis of nanoparticles in complex matrices. Journal of Analytical Atomic Spectrometry. Vol. 30, No. 6, pp: 1274-1285. Evironmental drivers (Master's thesis, University of Waterloo).
18
Eriksen, M.; Mason, S.; Wilson, S.; Box, C.; Zellers, A.; Edwards, W.; Farley, H. and Amato, S., 2013. Microplastic pollution in the surface waters of the Laurentian Great Lakes. Marine pollution bulletin. Vol. 77, No. 1, pp: 177-182.
19
Farrell, P. and Nelson, K., 2013. Trophic level transfer of microplastic: Mytilus edulis (L.) to Carcinus maenas (L.). Environmental Pollution. Vol. 177, pp: 1-3.
20
Fowler, C.W., 1987. Marine debris and northern fur seals: a case study. Marine pollution bulletin. Vol. 18, No. 6, pp: 326-335.
21
Galgani, F.; Hanke, G.; Werner, S.D.V.L. and De Vrees, L., 2013. Marine litter within the European marine strategy framework directive. ICES Journal of Marine Science. Vol. 70, No. 6, pp: 1055-1064.
22
GESAMP, 2015. Sources, fate and effects of microplastics in the environment: a global assessment. In: Kershaw, P.J. (Ed.), (IMO/FAO/UNESCO-IOC/UNIDO/WMO/IAEA/UN/ UNEP/UNDP Joint Group of Experts on the Scientific Aspects of Marine Environmental Protection). Rep. Stud. GESAMP. No. 90, 96 p.
23
Gray, C.A.; Kennelly, S.J.; Hodgson, K.E.; Ashby, C.J.T. and Beatson, M.L., 2001. Retained and discarded catches from commercial beach-seining in Botany Bay, Australia. Fisheries Research. Vol. 50, No. 3, pp: 205-219.
24
Gregory, M.R. and Andrady, A.L., 2003. Plastics in the marine environment. Plastics and the Environment. Vol. 379, pp: 389-390.
25
Gregory, M.R. and Ryan, P.G., 1997. Pelagic plastics and other seaborne persistent synthetic debris: a review of Southern Hemisphere perspectives. In Marine Debris. New York. pp: 49-66.
26
Güven, O.; Gökdağ, K.; Jovanović, B. and Kıdeyş, A.E., 2017. Microplastic litter composition of the Turkish territorial waters of the Mediterranean Sea, and its occurrence in the gastrointestinal tract of fish. Environmental Pollution. Vol. 223, pp: 286-294.
27
Jafarzadeh, H. and Farhang, M., 2006. Pollution at sea; 1st ed. Publishing Avaye ghalam. pp: 375-378 (Persian).
28
Karami, A.; Golieskardi, A.; Choo, C.K.; Romano, N.; Ho, Y.B. and Salamatinia, B., 2017. A high-performance protocol for extraction of microplastics in fish. Science of The Total Environment. Vol. 578, pp: 485-494.
29
Krdvany P., 1995. Water ecosystems Iran (Caspian Sea). Tehran: Dictionary Publisher. pp: 3-7 (Persian).
30
Lamberth, S.J.; Clark, B.M. and Bennett, B.A., 1995. Seasonality of beach-seine catches in False Bay, South Africa, and implications for management. South African Journal of Marine Science. Vol. 15, No. 1, pp: 157-167.
31
Liebezeit, G. and Dubaish, F., 2012. Microplastics in beaches of the East Frisian islands Spiekeroog and Kachelotplate. Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 89, No. 1, pp: 213-217.
32
Lithner, D.; Larsson, Å. and Dave, G., 2011. Environmental and health hazard ranking and assessment of plastic polymers based on chemical composition. Science of the Total Environment. Vol. 409, No. 18, pp: 3309-3324.
33
Lusher, A.L.; McHugh, M. and Thompson, R.C., 2013. Occurrence of microplastics in the gastrointestinal tract of pelagic and demersal fish from the English Channel. Marine pollution bulletin. Vol. 67, No. 1, pp: 94-99.
34
McClanahan, T.R. and Mangi, S.C., 2004. Gear‐based management of a tropical artisanal fishery based on species selectivity and capture size. Fisheries Management and Ecology. Vol. 11, No. 1, pp: 51-60.
35
Moore, C.J., 2008. Synthetic polymers in the marine environment: a rapidly increasing, long-term threat. Environmental research. Vol. 108, No. 2, pp: 131-139.
36
Nadal, M.A.; Alomar, C. and Deudero, S., 2016. High levels of microplastic ingestion by the semipelagic fish bogue Boops boops (L.) around the Balearic Islands. Environmental Pollution. Vol. 214, pp: 517-523.
37
Neves, D.; Sobral, P.; Ferreira, J.L. and Pereira, T., 2015. Ingestion of microplastics by commercial fish off the Portuguese coast. Marine pollution bulletin. Vol. 101, No. 1, pp: 119-126.
38
Obbard, R.W.; Sadri, S.; Wong, Y.Q.; Khitun, A.A.; Baker, I. and Thompson, R.C., 2014. Global warming releases microplastic legacy frozen in Arctic Sea ice. Earth's Future. Vol. 2, No. 6, pp: 315-320.
39
Oosterhuis, F.; Papyrakis, E. and Boteler, B., 2014. Economic instruments and marine litter control. Ocean & coastal management. Vol. 102, pp: 47-54.
40
Phillips, M.B. and Bonner, T.H., 2015. Occurrence and amount of microplastic ingested by fishes in watersheds of the Gulf of Mexico. Marine pollution bulletin. Vol. 100, No. 1, pp: 264-269.
41
Rios, L.M.; Moore, C. and Jones, P.R., 2007. Persistent organic pollutants carried by synthetic polymers in the ocean environment. Marine Pollution Bulletin. Vol. 54, No. 8, pp: 1230-1237.
42
Rochman, C.M.; Hoh, E.; Kurobe, T. and Teh, S.J., 2013. Ingested plastic transfers hazardous chemicals to fish and induces hepatic stress. Scientific reports. Vol. 3.
43
Romeo, T.; Pietro, B.; Pedà, C.; Consoli, P.; Andaloro, F. and Fossi, M.C., 2015. First evidence of presence of plastic debris in stomach of large pelagic fish in the Mediterranean Sea. Marine pollution bulletin. Vol. 95, No. 1, pp: 358-361.
44
Rummel, C.D.; Löder, M.G.; Fricke, N.F.; Lang, T.; Griebeler, E.M.; Janke, M. and Gerdts, G., 2016. Plastic ingestion by pelagic and demersal fish from the North Sea and Baltic Sea. Marine pollution bulletin. Vol. 102, No. 1, pp: 134-141.
45
Ryan, P.G.; Moore, C.J.; van Franeker, J.A. and Moloney, C.L., 2009. Monitoring the abundance of plastic debris in the marine environment. Philosophical Transactions of the Royal Society of London B: Biological Sciences. Vol. 364, No. 1526, pp: 1999-2012.
46
Setälä, O.; Fleming-Lehtinen, V. and Lehtiniemi, M., 2014. Ingestion and transfer of microplastics in the planktonic food web. Environmental pollution. Vol. 185, pp: 77-83.
47
Thompson, R.C.; Moore, C.J.; Vom Saal, F.S. and Swan, S.H., 2009. Plastics, the environment and human health: current consensus and future trends. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Biological Sciences. Vol. 364, No. 1526, pp: 2153-2166.
48
Thompson, R.C.; Olsen, Y.; Mitchell, R.P.; Davis, A.; Rowland, S.J.; John, A.W.; McGonigle, D. and Russell, A.E., 2004. Lost at sea: where is all the plastic? Science. Vol. 304, No. 5672, pp: 838-838.
49
Van Cauwenberghe, L. and Janssen, C.R., 2014. Microplastics in bivalves cultured for human consumption. Environmental Pollution. Vol. 193, pp: 65-70.
50
Van Cauwenberghe, L.; Vanreusel, A.; Mees, J. and Janssen, C.R., 2013. Microplastic pollution in deep-sea sediments. Environmental Pollution. Vol. 182, pp: 495-499.
51
Van Franeker, J.A.; Blaize, C.; Danielsen, J.; Fairclough, K.; Gollan, J.; Guse, N.; Hansen, P.L.; Heubeck, M.; Jensen, J.K.; Le Guillou, G. and Olsen, B., 2011. Monitoring plastic ingestion by the northern fulmar Fulmarus glacialis in the North Sea. Environmental Pollution. Vol. 159, No. 10, pp: 2609-2615.
52
Wagner, M.; Scherer, C.; Alvarez-Muñoz, D.; Brennholt, N.; Bourrain, X.; Buchinger, S.; Fries, E.; Grosbois, C.; Klasmeier, J.; Marti, T. and Rodriguez-Mozaz, S., 2014. Microplastics in freshwater ecosystems: what we know and what we need to know. Environmental Sciences Europe. Vol. 26, No. 1, 12 p.
53
Wright, S.L.; Thompson, R.C. and Galloway, T.S., 2013. The physical impacts of microplastics on marine organisms: a review. Environmental Pollution. Vol. 178, pp: 483-492.
54
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر جایگزینی سطوح مختلف پودر کنجاله سویا به جای پودر ماهی در جیره غذایی بر شاخص های رشد، کیفیت لاشه و برخی فاکتورهای خونی بچه ماهی استرلیاد (Acipenser ruthenus)
این تحقیق با هدف بررسی جایگزینی پودرکنجاله سویا به جای پودرماهی در جیره غذایی ماهی استرلیاد و تاثیر آن بر رشد، برخی فاکتورهای خونی و کیفیت لاشه در طی 56 روز انجام شد. تحقیق با 5 تیمار و 3 تکرار شامل تیمار 1 (شاهد) با 0%، تیمار 2 با 10%، تیمار 3 با 20%، تیمار 4 با 30/7 % و تیمار 5 با 45% پودرکنجاله سویا انجام شد. تعداد 300 عدد بچه ماهی با میانگین وزنی 1/8±70/95 گرم در 13 وان فایبرگلاس 2 تنی قرار گرفتند. پس از زیست سنجی و خونگیری از ماهیان، شاخص های رشد و فاکتورهای خونی و کیفیت لاشه تعیین گردید. نتایج نشان داد که ماهیان از لحاظ طول و ضریب چاقی دارای اختلاف معنی دار بودند (0/05>P). به طوری که جیره 10% کنجاله سویا باعث بیش ترین میزان شاخص های رشد در ماهیان شدند. بین تیمارها از لحاظ میزان هموگلوبین، هماتوکریت و پروتئین خون اختلاف معنی دار مشاهده شد (0/05>P). جیره 10 و 45% کنجاله سویا باعث بیش ترین میزان هموگلوبین، جیره 45% کنجاله سویا باعث بیش ترین میزان هماتوکریت و جیـره 30/7% کنجاله سویا باعث بیش ترین میزان پروتئین در خون در ماهیان شدند. بیش ترین میزان پروتئین خام لاشه متعلق به ماهیانی بود که از جیره 20% کنجاله سویا تغذیه کردند و این مقدار در مقایسه با سایر تیمارها تفاوت معنی داری داشت (0/05>P). لذا می توان گفت تیمار 2 و 3 بهترین تیمار از لحاظ دارا بودن کنجاله سویا می باشند.
http://www.aejournal.ir/article_91222_008127e289d31c027f640464cfed7518.pdf
2019-04-21
181
188
استرلیاد (Acipenser ruthenus)
پودر کنجاله سویا
شاخص های رشد
فاکتورهای خونی
کیفیت لاشه
حسام
صفایی
1
گروه شیلات، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران، صندوق پستی: 1616
AUTHOR
حسین
خارا
h.khara1974@yahoo.com
2
گروه شیلات، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران، صندوق پستی: 1616
LEAD_AUTHOR
بهرام
فلاحتکار
falahatkar@guilan.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران، صندوق پستی: 1144
AUTHOR
حبیب
وهاب زاده
habib.vahabzadeh@gmail.com
4
گروه شیلات، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران، صندوق پستی: 1616
AUTHOR
ابراهیمی، ع.، 1383. سطوح مختلف پروتئین و چربی بر رشد و کیفیت لاشه بچه ماهیان انگشت قد فیل ماهی و تاس ماهی ایرانی. رساله دکترای تخصصی شیلات. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. دانشکده شیلات و محیط زیست. 113 صفحه.
1
ابراهیمی، ع.؛ پوررضا، ج.؛ پاناماریوف، س.و.؛ کمالی، ا. و حسینی، ع.، ١۳٨۳. اثر مقادیر مختلف پروتئین و چربی بر شاخص های رشد و ترکیب شیمیایی لاشه بچه ماهیان انگشت قد فیل ماهی. نشریه علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی. شماره ٢، صفحات 229 تا 242.
2
امدادی، ب.؛ سجادی، م.م.؛ یزدانی، م.ع.؛ شکوریان، م. و پوردهقانی، م.، 1392. اﺛﺮ ﺟﺎﯾﮕﺰﯾﻨﯽ پودرﻣﺎﻫﯽ ﺑﺎ ﮐﻨﺠﺎﻟﻪ ﺳﻮﯾﺎ در ﺟﯿﺮه ﻏﺬاﯾﯽ ﺑﭽﻪ ﻣﺎﻫﯿﺎن ازون ﺑﺮون (Acipenser stellatus) ﺑﺮ ﺗﺮﮐﯿﺒﺎت ﻻﺷﻪ و ﻓﺎﮐﺘﻮرﻫﺎی ﺑﯿﻮﺷﯿﻤﯿﺎﯾﯽ ﭘﻼﺳﻤﺎی ﺧﻮن. ﻧﺸﺮﯾﻪ ﺑﻬﺮه ﺑﺮداری و ﭘﺮورش آﺑﺰﯾﺎن. سال 4، شماره 1، صفحات 41 تا 54.
3
تاتینا، م.؛ بهمنی، م.؛ سلطانی، م. و قریب خانی، م.، 1389. تاثیر سطوح مختلف ویتامین های C وE جیره بر میزان کلسترول پلاسما در ماهی استرلیاد بالغ پرورشی (Acipenser ruthenus). ﻧﺸﺮﯾﻪ زیست شناسی جانوری. شماره 1، صفحات 21 تا 31.
4
تقی زاده، و.؛ ایمانپور، م.ر.؛ اسعدی، ر.؛ چمن آرا، و. و شربتی، س.، ١۳٨٩. تاثیر جایگزینی پروتئین گیاهی به جای پودرماهی روی شاخص های رشد، کیفیت لاشه و پارامترهای بیوشیمیایی خون فیل ماهی جوان. مجله علمی شیلات ایران. دوره 19، شماره 4، صفحات 33 تا 42.
5
رحمتی،ف.؛فلاحتکار،ب.؛ امیری مقدم، ج. ومنییعی، ف.،1388. اثرات دوره های گرسنگی و رشد جبرانی بر فاکتورهای رشد ماهی آزاد دریای خزر. مجموعه چکیده مقالات اولین همایش علمی دانشجویی علوم شیلاتی. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری. صفحه 13.
6
ستاری، م.،1381. ماهی شناسی (1): تشریح و فیزیولوژی. انتشارات نقش مهر با همکاری دانشگاه گیلان. 659 صفحه.
7
محمدنژادشموشکی، م.،1391. کیفیت لاشه ماهی پنگوسی (Pangassius hypopthalmus) تحت تاثیر جیره های غذایی مختلف. مجله زیست شناسی جانوری. دانشگاه آزاد اسلامی واحد دامغان. سال 4، شماره 4، صفحات 45 تا 54.
8
Abdel-Tawwab, M.; Mousa, M.A.A.; Sharaf, S.M. and Ahmad, M.H., 2005. Effect of Crowding Stress on Some Physiological Functions of Nile Tilapia, Oreochromis niloticus (L.) Fed Different Dietary Protein Levels. International Journal of Zoological Research. Vol. 1, No. 1, pp: 41-47.
9
AOAC (Association of official Analytical chemist). 1995. Official method of analysis. 15th edn. AOAC. Washington. DC. USA.
10
Berge, G.M.; Grisdale Helland, B. and Helland, S.J., 1999. Soy protein concentrate in diets for Atlantic halibut, Hippoglossus hippoglossus. Aquaculture. Vol. 178, pp: 139-148.
11
Boonyaratpalin, M.; Suraneiranat, P. and Tunpibal, T., 1998. Replacement of fish meal with various types of soybean products in diets for the Asian seabass, Lates calcarifer. Aquaculture. Vol. 161, pp: 67-78.
12
Day, O.J. and Plascencia Gonzalez, H.G., 2000. Soybean protein concentrate as a protein source for turbot Scophthalmus maximus L. Aquaculture Nutrition. Vol. 6, pp: 221-228.
13
Gatlin, D.M.; Barrows, F.T.; Braown, P.; Dabrowski, K.; Gaylord, T.G.; Hardy, R.W.; Herman, E.; Hu, G.; Krogdahl, A.; Nelson, R.; Overturf, K.; Rust, M.; Sealy, W.; Skonberg, D.; Souza, E.J.; Stone, D.; Wilson, R. and Wurtele, E., 2007. Expanding the utilization of sustainable plant products in aqua feeds: a review. Aquaculture Research. Vol. 38, pp: 551-579.
14
Grisdale-Helland, B.;Helland,S.J. and Gatlin,D.M., 2009. The effects of dietary supplementation with mannan oligosaccharide, fructooligosaccharide or galacto oligosaccharide on the growth and feed utilization of Atlantic salmon (Salmo salar). Aquaculture. Vol. 283, pp: 163-167.
15
Hansen, A.C., 2009. Effect of replacing fish meal with plant protein in diet for Atlantic cod (Gadus morhua L.). PhD thesis. Bergen University.
16
Hung, S.S.O. and Dong, D.F., 2002. Nutrient requirments and feeding of finfish for Aquaculture, sturgeon, Acipenser spp. Department of animal science University of California. Vol. 24, pp: 334-357.
17
Imanpoor, M.R. and Azimi, A., 2010. Effect of replacing fish meal with soybean meal in diet on some morphometric indices of Persian Sturgeon, Acipenser persicus. World Journal of Zoology. Vol. 5, No. 4, pp: 320-323.
18
Klontz, G.W., 1994. Fish Hematology. In: Stolen, J.S.; Fletcher, T.C.; Rowley, A.F.; Kelikoff, T.C.; Kaattari, S.L. and Smith, S.A., (Eds.). Techniques in Fish Immunology. SOS Publications. pp: 121-132.
19
Lewis, S.M., 1984. Practical hematology. 265 P.
20
Martinez-Llorens, S.; Vidal, T.; Garcia, I.J.; Torres, P.M. and Cerda, M.J., 2009. Optimum dietary soybean meal level for maximizing growth and nutrient utilization of on-growing gilthead sea bream (Sparus aurata). Aquaculture Nutrition. Vol. 15, pp: 320-328.
21
Mazurkiewicz, J.; Przybyi, A. and Golski, J., 2009. Usability of some plant protein ingredients in the diets of Siberian sturgeon (Acipenser baerii). Archives of Polish Fisheries. Vol. 17, pp: 45-52.
22
Merrifield, D.L.; Bradley, G.; Harper, G.M.; Baker, R.T.M.; Munn, C.B. and Davies, S.J., 2011. Assessment of the effects of vegetative and lyophilized Pediococcus acidilactici on growth, feed utilization, intestinal colonization and health parameters of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture Nutrition. Vol. 17, No. 3, pp: 73-79.
23
Nguyen, N.; Davis, D.A. and Saoud, P., 2009. Evaluation of alternative protein sources to replace fish meal in practical diets for juvenile Tilapia, Oreochromis spp. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 40, pp: 113-121.
24
Olmos, J.; Ochoa, L. and Paniagua, J., 2011. Functional feed assessment on Litopenaeus vannamei using 100% fish meal replacement by soybean meal, high levels of complex carbohydrates and Bacillus probiotic strains. Journal of Marine Drugs. Vol. 9, pp: 1119-1132.
25
Panigrahi, A.; Kiron, V.; Puangkaew, J.; Kobayashi, T.; Statoh, S. and Sugita, H., 2005. The Viability of probiotic bacteria as a factor influencing the immune response in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 243, pp: 241-254.
26
Patriche, T.; Patriche, N.; Bocioc, E. and Coada, M.T., 2011. Serum biochemical parameters of farmed carp (Cyprinus carpio). Aquaculture, Aquarium, Conservation and Legislation. International Journal of the Bioflux Society. Vol. 4, pp: 137-140.
27
Peterson, D.; Vecsei, P. and Hochleithner, M., 2006. Threatened fishes of the world: Acipenser ruthenus Linnaeus, 1758 (Acipenseridae). Environmental Biology of Fishes. Vol. 78, pp: 211-212.
28
Przyby, A.; Mazurkiewicz, J. and Rozek, W., 2006. Partial substitution of fish meal with soybean protein concentrates and extracted rapeseed meal in the diet of sterlet (Acipenser ruthenus). J of Applied Ichthyology. Vol. 22, pp: 298-302.
29
Radu, D.; Oprea, L.; Bucur, C.; Costache, M. and Oprea, D., 2009. Characteristics of haematological parameters for carp culture and Koi (Cyprinus carpio Linneaus, 1758) reared in an intensive system. Journal of Animal Science and Biotechnology. Vol. 66, pp: 1-2.
30
Raida, M.K.; Larsen, J.L.; Nielsen, M.E. and Buchmann, K., 2003. Enhanced resistance of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss, against Yersinia ruckeri challenge following oral administration of Bacillus subtilis and B. licheniformis (BioPlus2B). Journal of Fish Diseases. Vol. 26, pp: 495-498.
31
Ronyai, A.; Csengeri, I. and Varadi, I., 2002. Partial substitution of animal protein with full-fat soybean meal and amino acid supplementation in the diet of Siberian sturgeon (Acipenser baerii). Journal of Applied Ichthyology. Vol. 18, pp: 682-684.
32
Sener, E.; Yıldız, M. and Savaş, S., 2006. Effect of vegetable protein and oil supplementation on growth performance and body composition of Russian sturgeon juveniles (Acipenser gueldenstaedtii) at low temperatures. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 6, pp: 23-27.
33
Shah Alam, M.D.; Watanabe, W.O. and Sullivan, K.B., 2006. Replacement of menhaden fishmeal by soybean meal for the diet of juvenile black sea bass (Centropristis striata) culture. University of North Carolina Wilmington Center for Marine Science Aquaculture Program.
34
Soltan, M.A.; Manafy, M.A. and Wafa, M.I.A., 2008. Effect of replacing fish meal by mixture of different plant proteinsources in Nile tilapia (Oreochromis niloticus) diets. Global Veterinaria. Vol. 2, No. 4, pp: 157-164.
35
Taghizadeh, V.; Imanpour, M.R.; Asadi, R.; Chaman Ara, V. and Sharbati, S., 2011. Effect of vegetable protein Substitution of fish meal on growth parameters, carcass quality and blood biochemical parameters in young Beluga Sturgeon (Huso huso). Iranian Journal of Fisheries. Vol. 4, pp: 33-42.
36
Takagi, S.; Shimeno, S.; Hosokawa, H. and Ukawa, M., 2001. Effect of lysine and methionine supplementation to a soyprotein concentrate diet for red sea bream Pagrus major. Fisheries Science. Vol. 67, pp: 1088-1096.
37
Tayebi, L.; Mohammdrezaei, D.; Sobhan Ardakani, S. and Cheraghi, M., 2011. Growth performance and food conversion ratio of Persian sturgeon (Acipenser persicus) at different level of dietary protein. 2nd International Conference on Environmental Science and Technology. Singapore.
38
Tietz, N.W., 1986. Text book of clinical chemistry, W.B. Saunders. 579 P.
39
Tucker, B.J.; Booth, M.A.; Allan, G.L.; Booth, D. and Fielder, D., 2006. Effects of photoperiod and feeding frequency on performance of newly weaned Australian snapper Pagrus auratus. Aquaculture. Vol. 258, pp: 514-520.
40
Webster, C.C. and Lim, C.E., 2002. Nutrient requirement and feeding of finfish for aquaculture. CAB International. CABI Publishing. 418 P.
41
Zhou, Q.C.; Mai, K.S.; Tan, B.P. and Liu, Y.J., 2005. Partial replacement of fishmeal by soybean meal in diets for juvenile cobia, Rachycentron canadum. Aquaculture Nutrition. Vol. 11, pp: 175-182.
42
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه ویژگیهای زیستی Paracobitis hircanica سگ ماهی ( Mousavi-Sabet و همکاران، 2015) در رودخانه زاو پارک ملی گلستان
جهت بررسی ویژگی های زیستی سگ ماهی (Paracobitis hircanica) تعداد 150 قطعه به وسیله دستگاه الکتروشوکر از دی ماه 1394 تا خرداد ماه 1395 صید گردید. نسبت جنسی نر به ماده در جمعیت مورد مطالعه 0/65 : 1 بود که نشان دهنده اختلاف معنیداری بین نسبت جنسی نر و ماده در جمعیت فوق بود (0/05>x 2= 6/83, p). بیشینه طول کل و وزن ماده ها 87 میلی متر و 5/30 گرم و برای نرها 104 میلیمتر و 7/31 گرم ثبت گردید. رابطه طول و وزن جنس ماده r2=0/97) W= 0/0085 TL 2/89) و برای جنس نر r2=0/98) W= 0/0109 TL 2/74) و برای جمعیت r2=0/97) W= 0/0099 TL 2/80) به دست آمد. نتایج نشان داد که الگوی رشد از نوع ایزومتریک در ماده ها و آلومتریک منفی در گروه نرها و جمعیت بود (t-test, tmale =6.31, tfemale = 1.61, tPopulation = 5.03, p < 0.05). میانگین هم آوری مطلق و هم آوری نسبی به ترتیب برابر با 328/86 و 11047/56 (تخم به ازای هر کیلوگرم وزن بدن) محاسبه شد. میانگین قطر تخمک ها 0/99 میلیمتر و از 0/45 تا 1/79 متغییر بود. بالاترین میانگین شاخص گنادوسوماتیک (GSI) برای جنس ماده در ماه خرداد و برای جنس نر در ماه اردیبهشت مشاهده گردید که به ترتیب 8/06 و 1/43 برای ماده ها و نرها مشاهده گرید.
http://www.aejournal.ir/article_91252_18aa9b8490859b55e4673caf1d8fdac4.pdf
2019-04-21
189
196
P. hircanica
الگوی رشد
شاخص گنادوسوماتیک
نهر زاو
پارک ملی گلستان
محمد
عطانیا
mohamadatania49@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران، صندوق پستی: 163
AUTHOR
رحمان
پاتیمار
rpatimar@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران، صندوق پستی: 163
LEAD_AUTHOR
محمد
هرسیج
m_harsij80@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران، صندوق پستی: 163
AUTHOR
ضیاء
کردجزی
ziya.kordjazi@gonbad.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران، صندوق پستی: 163
AUTHOR
آسایش نائینی، س.؛ قربانی، ر.؛ پاتیمار، ر. و سلمان ماهینی، ع.ر.، 1387. بررسی برخی پارامترهای پویایی و تراکم جمعیت لارو سگ ماهی جویباری Paracobitis malapterura و ارتباط آن با عوامل محیطی در رودخانه تیل آباد و زرین گل استان گلستان. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 109 صفحه.
1
پاتیمار، ر.؛ مهدوی، م.ج. و آدینه، ح.، 1387. بیولوژی گاوماهی شنی ( Neogobius fluviatilis pallasi (Berg, 1916 در رودخانه زرین گل (البرز شرقی). مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی. جلد 15، شماره 1، ویژه نامه منابع طبیعی، صفحات 54 تا 64.
2
حاجیرادکوچک، ع.؛ پاتیمار، ر. و بهلکه، ا.، 1395. بررسی مقایسهای زیستشناسی تولیدمثلی ماهی کاراس (Carassius gibelio) در دو منطقه سد بوستان و آب بندان آلاکولی استان گلستان. زیستشناسی جانوری تجربی. سال 5، شماره 2، صفحات 67 تا 76.
3
راطبی، پ.، 1379. بررسی بیوسیستماتیک ماهی Capoeta قمرود. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه شهید بهشتی. 82 صفحه.
4
شریفینیا، م.؛ قربانی، ر.؛ حاجی مرادلو، ع.م. و آزرمدل، ح.، 1394. بررسی الگوی رشد سگ ماهی جویباری (Paracobitis hircanica) در رودخانه گرمابدشت، استان گلستان. پژوهشهای ماهی شناسی کاربردی. دوره 3، شماره 1، صفحات 39 تا 52.
5
عباس زاده تهرانی، ن.، ١٣٨1. بررسی نقش تغییر کاربری اراضی بر روی میزان دبی سیلاب ها با استفاده از GIS/RS منطقة مورد مطالعه: حوزة آبریز رودخانة دوغ. پایان نامة کارشناسی ارشد. دانشکده محیط زیست. انتشارات دانشگاه تهران. ٢٣٤ صفحه.
6
عبدلی، ا.، 1378. ماهیان آب های داخلی ایران. انتشارات موزه طبیعت و حیات وحش ایران. 377 صفحه.
7
کیابی، ب.؛ زهزاد، ب.؛ فرهنگ درهشوری، ب.؛ مجنونیان، ه. و گشتاسب میگونی، ح.، 1372. پارک ملی گلستان. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. تهران. 129 صفحه.
8
میکاییلی، ع.؛ میرکریمی، ح. و یزداد داد، ح.، 1380. پارک ملی گلستان قبل و بعد از سیل مرداد 1380، بایدها و نبایدها. کارگروه محیط زیست. مجموعه مقالات تخصصی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. کنفرانس همایش بررسی سیل در استان گلستان. سازمان حفاظت از محیط زیست. صفحات 42 تا 49.
9
Abbasi F.; Ghorbani R.; Molaei M. and Naeimi, A., 2013. Identification and Distribution of Fish Fauna in Kaboodval Stream (Golestan Province, Iran). Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 5, No. 5, pp: 467-473.
10
Bagenal, T. and Tesch, F., 1978. Methods for Assessment of Fish Production in Fresh Waters. IBP Handbook 3 Blackwell, Oxford. pp: 101-136.
11
Beverton, R.J.H., 1992. Patterns of reproductive strategy parameters in some marine teleost fishes. J. Fish. Biolo. Vol. 41, pp: 137-160.
12
Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology. South Asian publishers Pvt. Ltd, New Delhi, International Book Co. Abseccon high Lands, N.J. 147 p.
13
Darvish Sefat, A., 2006. Atlas of protected areas of Iran. Department of the Environment, Iran. 157 p.
14
Jamali, H.; Patimar, R.; Farhadi, M. and Daraei, V., 2016. Age, growth and reproduction of Paracobitis malapterura (Teleostei: Nemacheilidae) from Qom River, Iran. Iranian Journal of Ichthyology. Vol. 3, No. 1, pp: 3-52.
15
Kuliev, Z.M., 1984. Ob izmenchivosti morphometricheskikh priznakov kaspiskoi vobli Rutilus rutilus caspicus (Jakowlew) (Cyprinidae). Voprosi Ikhtiologii. Vol. 24, No. 6.
16
Mann, R.H.K., 1973. Observations on the age, growth, reproduction and food of the roch Rutilus rutilus (L) in two rivers in southern England. J. Fish Biol. Vol. 5, pp: 707-736.
17
Mousavi-Sabet, H.; Sayyadzadeh, G.; Esmaeili, H.R.; Eagderi, S.; Patimar, R. and Freyhof, J., 2015. Paracobitis hircanica, a new crested loach from the southern Caspian Sea basin (Teleostei: Nemacheilidae). Ichthyol. Explor. Freshwaters. Vol. 25, No. 4, pp. 339-346.
18
Nikolskii, G.V., 1969. Theory of fish population dynamics as the biological background for rational exploitation & managments of fishery resources. Oilver & Boyd. Edin Burgh. 323 p.
19
OlivaPaterna,F.J.;Torralva,M.andFernandezDelgado, C., 2002. Age, growth and reproducton of Cobitis puludica in a seasonal stream. J.Fish.Biol. Vol. 63, pp: 389-404.
20
Patimar, R.; Adineh, H. and Mahdavi, M.J., 2009. Life history of the Western crested loach Paracobitis malapterura in the Zarrin-Gol River, East of the Elburz Mountains (Northern Iran). Biologia. Vol. 64, pp: 350-355.
21
Pauly, D., 1984. Fish population dynamics in tropical waters. A manual for use with programmable calculators. ICLARM studies and reviews (Manila). Vol. 8, pp: 1-325.
22
Polvina, J.J. and Ralston, S., 1987. Tropical snappers and groupers biology and fisheries management. ocean Resour. Mar.Policy Ser. Boulder. Co. USA, Westview Press. 656 p.
23
Turkmen, M.; Erdogan, O.; Yeldirim, A. and Akyurt, I., 2001. Reproduction tactics, age and growth of Capoeta capoeta umbla from the Akkale region of the Karasu River, Turkey. Fisheries Research. Vol. 1220, pp: 1-12.
24
Warren, A.N. and Taylor, C.M., 2001. Developing heritage tourism in New Zealand. Center for Research, Evaluation and Social Assessment, Wellington N.Z. pp: 98-101.
25
Weatherley, A.H. and Gill, H.S., 1987. The biology of Fish Growth. London: Academic Press Inc. 443 p.
26
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات مواد محافظ سرمایی مختلف و نسبت های مختلف رقیق سازی روی کیفیت اسپرم انجمادزدایی شده ازون برون (Acipenser stellatus)
انجماد اسپرم به عنوان روشی موثر در جلوگیری از انقراض نسل گونه های در معرض خطر می باشد. هدف از این پژوهش، بررسی اثر حفاظتی دی متیل سولفوکساید و اتیلن گیلکول در غلظت های مختلف و تاثیر نسبت های مختلف رقیق سازی روی درصد و زمان تحرک اسپرم ها پس از انجمادزدایی بود. برای این کار دی متیل سولفوکساید و اتیلن گیلکول هر کدام درغلظت های 5، 10 و 20 درصد به رقیق کننده اضافه شدند. سپس رقیق کننده با نسبت های 0/5:1، 1:1، 2:1 و 5:1 با اسپرم مخلوط شده و سپس اسپرم منجمد شد. در این تحقیق از اسپرم 4 مولد نر ازون برون استفاده شد. اسپرم های منجمد شده بعد از 20 و 40 روز از حالت انجماد خارج شدند. نتایج به دست آمده از آزمایش نشان داد که در بین تیمارهای مختلف رقیق سازی همراه با غلظت های مختلف دی متیل سولفوکساید و اتیلن گلیکول روی طول دوره تحرک و درصد تحـرک اسپـرم ازون برون پس از 20 و 40 روز انجماد اختلاف معنی داری مشاهده شد (0/05>P). بالاترین طول دوره تحرک و درصد تحرک اسپرم های انجمادزدایی شده بعد از 20 و 40 روز انجماد، در اسپرمی که دارای دی متیل سولفوکساید 10 درصد و نسبت رقیق سازی 1:1 بود مشاهده شد (به ترتیب ثانیه 24/81±253/00 و درصد 3/20±36/51؛ ثانیه 23/70±234/36 و درصد 2/12±27/54).
http://www.aejournal.ir/article_91281_950e7b496d85ef9e9468390921f3ad72.pdf
2019-04-21
197
202
ازون برون
دی متیل سولفوکساید
اتیلن گیلکول
تحرک اسپرم
مهدی
عادلی
mehdi.adeli1361@chmail.ir
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، واحد آزادشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، آزادشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
شهرام
ملکی
shahram.m@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
AUTHOR
محمدرضا
ایمانپور
imanpoor.m@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
ابراهیم
مسعودی
masoudi.e@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
زینب
عادلی
zeinab.a@yahoo.com
5
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، واحد آزادشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، آزادشهر، ایران
AUTHOR
Aas, G.H.; Refstie, T. and Gjerde, B., 1991. Evaluation of milt quality of Atlantic salmon. Aquaculture. Vol. 95, pp: 125-132.
1
Alavi, S.M.H.; Amiri, B.M.; Cosson, J.; Pourkazemi, M. and Karami, M., 2002. A preliminary investigation on motility of Acipenser persicus spermatozoa: a comparative study between freshwater and saline solutions at di, erent dilution rate. The 2nd National Regional Symposium on Sturgeon, Rasht, Iran. pp: 128-130.
2
Billard, R.; Tsvetkova, L.I.; Cosson, J. and Linhart, O., 1997. Motility analysis of fresh and thawed spermatozoa in (Acipenser beari). 3rd Inter. Sym. Sturgeon. Piacenza, Italy.
3
Billard, R., 2001. Techniques of Genetic Resource Banking in Fish. In: Cryobanking the Genetic Resource, (Eds: Watson, P.F. and Holt, W.V.,), London and New York. pp: 145-158.
4
Billard, R.: Cosson, S.B. and Pourkazemi, M., 2004. Cryopreservation and short-term sturgeon sperm, a review. Aquaculture. Vol. 236, pp: 1-9.
5
Chulhong, P.F. and Chapman, A., 2005. An extenser solution for the short-term storage of sturgeon semen. Aquaculture. Vol. 67, pp: 52-57.
6
Cosson, J.; Linhart, O.: Mims, S.D., Shelton, W.L. and Rodina, M., 2000. Analysis of motility parameters from paddlefish and shovelnose sturgeon spermatozoa. Journal of Fish Biology. Vol. 56, pp: 1-20.
7
Dzuba, B.B.; Kopeika, F.F., Cherepanov, V.V. and Drokin, S.L., 1999. Sturgeon sperm quality after 6 years of cryopreservation. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 15, pp: 312-322.
8
Findeis, E.K., 1997. Osteology and phylogenetic relationships of recent sturgeons. In: Sturgeon Biodiversity and Conservation (eds Birstein, V.J.; Waldman, J.R. and Bemis, W.E.,). Kluwer Academic Publishers, Dordrecht. pp: 73-106.
9
Galli, A.; Vanni, R.; Rossetti, S. and Aleandri, R., 2006. Milt cryopreservation in Italian Cobica sturgeon (Acipenser naccarii). Aquaculture Society. 272 p.
10
Glogowski, J.; Kolman, R.; Szcepkowski, M.; Horvath, A.; Urbanyi, B.; Sieczynski, P.; Rzemieniecki, A.; Domagala, J.; Demianowicz, W.; Kowalski, A. and Ciereszko, A., 2002. Fertilization rate of Siberian sturgeon (Acipenser baeri) milt cryopreserved with methanol. Journal Aquaculture. Vol. 211, pp: 367-373.
11
Harvath, A.; Wayman, W.R.; Urbanyi, B.; Ware, K.M.; Dean, J.C. and Tiersch, T.S., 2005. The relationship of the cryoprotectants methanol and dimethyl sulfoxide and hyperosmotic extenders on sperm cryopreservation of two North-American sturgeon species. Journal Aquaculture. Vol. 247, pp: 243-251.
12
Lahnsteiner, F.; Berger, B.; Horvath, A. and Urbanyi, B., 2004. Stuies on the semen biology and sperm cryopreservation in the starlet (Acipenser ruthenus). Aquaculture Reserch. Vol. 35, pp: 519-528.
13
Linhart, O.; mims, A.D. and Shelton, W.L., 1995. Motility of spermatozoa from shovelnose sturgeon (Scaphirhynchus platorynechus) and Paddlefish (Polyodon spathula). Journal of fish Biology. Vol. 47, pp: 902-909.
14
Linhart, O.; Mims, S.D.; Glomelsky, B.; Cvetkova, L.I.; Cosson, J.; Rodina, M.; Horvath, A. and Urbanyi, B., 2006. Effect of cryoprotectant and male on motility parameters and fertilization rate in paddlefish (Polyodon spathula) frozenthowed spermatozoa. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, pp: 389-394.
15
Liu, L.; Wei, Q.; Guo, F. and Zhang, T., 2006. Cryopreservation of Chinese sturgeon (Acipenser sinensis) sperm. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, pp: 384-388.
16
Mansour, N.; Lahnsteiner, F. and Berger, B., 2004. Characterization of the testicular semen of the African catfish (Clarias gariepinus) and its short-term storage. Aquaculture Reserch. Vol. 35, pp: 232-244.
17
Rana, A., 1995. The sturgeons. In Nash, C.E. and Novotny, A.J., (eds). Production of Aquatic Animals. Elsevier, Amsterdam. pp: 95-108.
18
Stoss, J., 1983. Fish gamete preservation and spermatozoa physiology. In Hoar, W.S.; Randall, D.J. and Donaldson, E.M., editors. Fish physiology, volume IXB. Academic Press, New York. pp: 305-350.
19
Turner, E. and Montgomerie, R., 2002. Ovarian fluid enhances sperm movement in Arctic charr. Jornal of Fish Biology. pp: 1570-1579.
20
21
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تجمع فلزات سنگین در بافت عضله ماهی سیاه کولی (Vimba vimba) در رودخانه سیاه درویشان استان گیلان
در این پژوهش، میزان غلظت ده فلز (آرسنیک، آهن، جیوه، روی، سرب، سلنیوم، کادمیوم، مس، منگنز و نیکل) در بافت عضله 20 عدد ماهی سیاه کولی (Vimba vimba) صید شده به وسیله تور پرتابی سالیک از رودخانه سیاه درویشان استان گیلان در تابستان 1395، توسط دستگاه طیف سنجی جذب اتمی Varian موردمطالعه قرارگرفتند.میزان کمترین و بیش ترین تجمع فلزات سنگین به ترتیب: روی 19/55-23/15، آهن 11/50-13/41، مس 1/58-1/80، منگنز 1/45-1/66، سرب 0/56-0/67، آرسنیک 0/45-0/53، سلنیوم 0/39-0/48، نیکل 0/26-0/29، کادمیوم 0/16-0/19 و جیوه 0/059-0/071 میکروگرم بر گرم وزن خشک، مشاهده گردید. با توجه به نتایج این مطالعه، میانگین غلظت تمام فلزات در بافت عضله ماهی سیاه کولی به جز آرسنیک (0/042±0/490)، سرب (0/056±0/602) و منگنز (0/098±1/557)، پایینتر از حد مجاز تعیین شده توسط استاندارد جهانی FAO/WHO بودند.
http://www.aejournal.ir/article_91299_37acc5cb33f786b8997c405f39fd9ced.pdf
2019-04-21
203
210
فلزات سنگین
سیاه کولی
رودخانه سیاه درویشان
بافت عضله
تجمع زیستی
محمد
اتفاق دوست
ettefaghdoost@phd.guilan.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران، صندوق پستی: 1144
LEAD_AUTHOR
حمید
علاف نویریان
hamidnaviri@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران، صندوق پستی: 1144
AUTHOR
ستاری، م.: شاهسونی، د. و شفیعی، ش.، 1383. ماهی شناسی (2) (سیستماتیک) انتشارات حق شناس. 502 صفحه.
1
فرهادی، ا. و یاوری، و.، 1392. پایش زیستی فلزات سنگین (Pb, Cd, Fe, Zn, Ni, Cu) توسط بافت های مختلف سیاه ماهی فلس ریز (Capoeta damascina) در رودخانه سزار، استان لرستان. مجله علمی شیلات ایران. شماره 22، صفحات 126 تا 131.
2
نصراله زاده ساروی، ح.؛ پورغلام، ر.؛ پورنگ، ن.؛ رضایی، م.؛ مخلوق، ا. و یونسی پور، ح.، 1392. مطالعه تجمع برخی از فلزات سنگین در بافت خوراکی ماهی کپور و برآورد میزان سیبل خطر در حوزه (Cyprinus carpio) ایرانی دریای خزر (سال 1389). مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. شماره 103، صفحات 33 تا 44.
3
واردی، س.ا؛ نصراله زاده ساروی، ح.؛ نجف پور، ش.؛ غلامی پور، س.؛یونسی پور،ح. و علومی،ی.، 1391. مطالعه بر روی آلودگی های محیطی (فلزات سنگین، هیدروکربن ها، سموم ارگانوکلره و شوینده ها) در آب، بستر و ماهی های نواحی جنوبی دریای خزر (سال های 1387-1388). گزارش نهایی. ساری. پژوهشکده اکولوژی دریای خزر.
4
Abdoli, A. and Naderi, M., 2009. Biodiversity of fishes of the southern basin of the Caspian Sea. Abzian Scientific Publication, Tehran. Vol. 238, 237 p.
5
Ahalya, N.; Ramachandra, T. and Kanamadi, R., 2003. Biosorption of heavy metals. Research Journal of Chemistry and Environment. Vol. 7, pp: 71-79.
6
Alhashemi, A.H.; Sekhavatjou, M.; Kiabi, B.H. and Karbassi, A., 2012. Bioaccumulation of trace elements in water, sediment, and six fish species from a freshwater wetland, Iran. Microchemical Journal. Vol. 104, pp: 1-6.
7
Alloway, B.J., 2013. Sources of Heavy Metals and Metalloids in Soils. In: Alloway B. (eds). Environmental Pollution, Springer, Dordrecht. Vol. 22, pp: 11-50.
8
Anan, Y.; Kunito, T.; Tanabe, S.; Mitrofanov, I. and Aubrey, D.G., 2005. Trace element accumulation in fishes collected from coastal waters of the Caspian Sea. Marine Pollution Bulletin. Vol. 51, pp: 882-888.
9
Authman, M.M.; Zaki, M.S.; Khallaf, E.A. and Abbas, H.H., 2015. Use of fish as bio-indicator of the effects of heavy metals pollution. Journal of Aquaculture Research & Development. Vol. 6, pp: 1-13.
10
Azaman, F.; Juahir, H.; Yunus, K.; Azid, K.M.; Toriman, M.E.; Mustafa, A.D.; Amran, M.A.; Che, H. and Mohd, S., 2015. Heavy metal in fish: Analysis and human health-a review. Jurnal Teknologi. Vol. 77, pp: 61-69.
11
Bosch, A.C.; O'Neill, B.; Sigge, G.O.; Kerwath, S.E. and Hoffman, L.C., 2016. Heavy metals in marine fish meat and consumer health: a review. Journal of the Science of Food and Agriculture. Vol. 96, pp: 32-48.
12
Canbek, M.; Demir, T.A.; Uyanoglu, M.; Bayramoglu, G.; Emiroglu, Ö.; Arslan, N. and Koyuncu, O., 2007. PreliminaryAssessment of Heavy Metals in Water and Some Cyprinidae species from the Porsuk River, Turkey. Journal of Applied Biological Sciences. Vol. 87, pp 195-204.
13
Carvalho, M.; Santiago, S. and Nunes, M.L., 2005. Assessment of the essential element and heavy metal content of edible fish muscle. Analytical and Bioanalytical Chemistry. Vol. 382, pp: 426-432.
14
Castilhos, Z.C.; Rodrigues-Filho, S.; Rodrigues, A.P.C.; Villas-Bôas, R.C.; Siegel, S.; Veiga, M.M. and Beinhoff, C., 2006. Mercury contamination in fish from gold mining areas in Indonesia and human health risk assessment. Science of the Total Environment. Vol. 368, pp: 320-325.
15
Castro-González, M. and Méndez-Armenta, M., 2008. Heavy metals: Implications associated to fish consumption. Environmental toxicology and pharmacology. Vol. 26, pp: 263-271.
16
Coad, B.W., 1998. Systematic biodiversity in the freshwater fishes of Iran. Italian Journal of Zoology. Vol. 65, pp: 101-108.
17
Dhanakumar, S.; Solaraj, G. and Mohanraj, R., 2015. Heavy metal partitioning in sediments and bioaccumulation in commercial fish species of three major reservoirs of river Cauvery delta region, India. Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 113, pp: 145-151.
18
Duruibe, J.O.; Ogwuegbu, M. and Hgwurugwu, J., 2007. Heavy metal pollution and human biotoxic effects. International journal of physical sciences. Vol. 2, pp: 112-118.
19
El-Moselhy, K.M.; Othman, A.; El-Azem, H.A. and El-Metwally, M., 2014. Bioaccumulation of heavy metals in some tissues of fish in the Red Sea, Egypt. Egyptian Journal of Basic and Applied Sciences. Vol. 1, pp: 97-105.
20
Esmaeili, H.R.; Coad, B.W.; Mehraban, H.R.; Masoudi, M.; Khaefi, R.; Abbasi, K.; Mostafavi, H. and Vatandoust, S., 2015. An updated checklist of fishes of the Caspian Sea basin of Iran with a note on their zoogeography. Iranian Journal of Ichthyology. Vol. 1, pp: 152-184.
21
Esmaeli, H.R.; Teimori, A.; Feridon, O.; Abbasi, K. and Brian, W.C., 2015. Alien and invasive freshwater fish species in Iran: Diversity, environmental impacts and management. Iranian Journal of Ichthyology. Vol. 1, pp: 61-72.
22
Ghaderi, N.; Qoddusi, J. and Tabatabai, M.R., 2001. Evaluation the Landuse Effects on Surfacewater Quality and pollution Transport Modelling by Mathematical Model (AQUALM) in Siah–Darvishan basin of Gilan. Kurdestan Agricultural and Natural Resources Research Center. http:// agris. fao. org / agris - search / search. do? record ID :IR 2008 001177.
23
Ghafouri, M.; Ghaderi, N.; Tabatabaei, M.; Versace, V.; Ierodiaconou, D.; Barry, D. and Stagnitti, F., 2010. Land use change and nutrients simulation for the Siah Darvishan basin of the Anzali wetland region, Iran. Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 84, pp: 240-244.
24
Islam, M.S.; Ahmed, M.K.; Raknuzzaman, M.; Habibullah-Al-Mamun, M. and Islam, M.K., 2015. Heavy metal pollution in surface water and sediment: a preliminary assessment of an urban river in a developing country. Ecological Indicators. Vol. 48, pp: 282-291.
25
Järup, L., 2003. Hazards of heavy metal contamination. British medical bulletin. Vol. 68, pp: 167-182.
26
Kaçar, E.; Akın, H.K. and Uğurlu, P., 2017. Determination of Heavy Metals in Tissues of Barbus grypus (Heckel, 1843) from Batman Dam, Turkey. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 17, pp: 789-794.
27
Kiabi, B.H.; Abdoli, A. and Naderi, M., 1999. Status of the fish fauna in the South Caspian Basin of Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 18, pp: 57-65.
28
Köse, E.; Çiçek, A.; Uysal, K.; Tokatlı, C.; Emiroğlu, Ö. and Arslan, N., 2015. Heavy Metal Accumulations in Water, Sediment, and Some Cyprinid Species in Porsuk Stream (Turkey). Water Environment Research. Vol. 87, pp: 195-204.
29
Leung, H.; Leung, A.; Wang, H.; Ma, K.; Liang, Y.; Ho, K.; Cheung, K.; Tohidi, F. and Yung, K., 2014. Assessment of heavy metals/metalloid (As, Pb, Cd, Ni, Zn, Cr, Cu, Mn) concentrations in edible fish species tissue in the Pearl River Delta (PRD), China. Marine pollution bulletin. Vol. 78, pp: 235-245.
30
Łuczyńska, J.; Paszczyk, B. and Łuczyński, M.J., 2018. Fish as a bioindicator of heavy metals pollution in aquatic ecosystem of Pluszne Lake, Poland, and risk assessment for consumer's health. Ecotoxicology and Environmental safety. Vol. 153, pp: 60-67.
31
Makedonski, L.; Peycheva, K. and Stancheva, M., 2017. Determination of heavy metals in selected black sea fish species. Food Control. Vol. 72, pp: 313-318.
32
Mance, G., 2012. Pollution threat of heavy metals in aquatic environments. Springer Science and Business Media. Vol. 1, 363 p. ISBN: 1851660399.
33
Moore, J.W. and Ramamoorthy, S., 2012. Heavy metals in natural waters: applied monitoring and impact assessment. Springer Science and Business Media. Vol. 1, 263 p. ISBN: 978-261-4612-5210-4618.
34
Oymak, S.; Karadede-Akin, H. and Dogan, N., 2009. Heavy metal in tissues of Tor grypus from Atatürk Dam Lake, Euphrates River-Turkey. Biologia. Vol. 64, pp: 151-155.
35
Rakocevic, J.; Sukovic, D. and Maric, D., 2018. Distribution and Relationships of Eleven Trace Elements in Muscle of Six Fish Species from Skadar Lake (Montenegro). Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 18, pp: 647-657.
36
Şaşi, H.; Yozukmaz, A. and Yabanli, M., 2017. Heavy metal contamination in the muscle of Aegean chub (Squalius Fellowesii) and potential risk assessment. Environmental Science and Pollution Research. Vol. 25, pp: 1-9.
37
Siraj, M.; Khisroon, M.; Khan, A.; Zaidi, F.; Ullah, A. and Rahman, G., 2018. Bio-monitoring of Tissue Accumulation and Genotoxic Effect of Heavy Metals in Cyprinus carpio from River Kabul Khyber Pakhtunkhwa Pakistan. Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 100, pp: 1-6.
38
Spanopoulos-Zarco, P.; Ruelas-Inzunza, J.; Aramburo Moran, I.; Bojórquez-Leyva, H. and Páez-Osuna, F., 2017. Differential Tissue Accumulation of Copper, Iron, and Zinc in Bycatch Fish from the Mexican Pacific. Biological trace element research. Vol. 176, pp: 201-206.
39
Tepe, Y.; Türkmen, M. and Türkmen, A., 2008. Assessment of heavy metals in two commercial fish species of four Turkish seas. Environmental monitoring and assessment. Vol. 146, pp: 277-284.
40
Tuzen, M., 2009. Toxic and essential trace elemental contents in fish species from the Black Sea, Turkey. Food and Chemical Toxicology. Vol. 47, pp: 1785-1790.
41
Uysal, K.; Emre, Y. and Köse, E., 2008. The determination of heavy metal accumulation ratios in muscle, skin and gills of some migratory fish species by inductively coupled plasma-optical emission spectrometry (ICP-OES) in Beymelek Lagoon (Antalya/Turkey). Microchemical journal. Vol. 90, pp:67-70.
42
Uysal, K.; Köse, E.; Bülbül, M.; Dönmez, M.; Erdoğan, Y.; Koyun, M.; Ömeroğlu, Ç. and Özmal, F., 2009. The comparison of heavy metal accumulation ratios of some fish species in Enne Dame Lake (Kütahya/Turkey). Environmental monitoring and assessment.Vol. 157, pp: 355-362.
43
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه زیست شناسی تولیدمثلی جنس نر سیاه ماهی فلس ریز (Capoeta damscina) و سیاه ماهی خالدار (Capoeta trutta) در رودخانه قشلاق سنندج در طی فصل تولیدمثل
در تحقیق حاضر بهمنظور مقایسه زیستشناسی تولیدمثلی مولدین سیاه ماهی فلس ریز (Capoeta damascina) و سیاه ماهی خالدار (Capoeta trutta)، مولدین از رودخانه قشلاق سنندج در طی فصل تولیدمثل جمع آوری شد. سپس پارامترهایی از قبیل طول کل و وزن کل پارامترهای کیفی اسپرم و استروئیدهای جنسی هر دو گروه مولدین سنجش گردید. طول کل و وزن کل در مولدین نر سیاه ماهی فلس ریز سه ساله به طور معنی داری بالاتر از مولدین نر سیاه ماهی خالدار سه ساله بود (0/05>P). حجم اسپرم، تراکم اسپرم، اسپرماتوکریت، استروئیدهای جنسی تستوسترون و دی هیدروکسی پروژسترون در مولدین سیاه ماهی خالدار به طور معنی داری بالاتر از مولدین سیاه ماهی فلس ریز بود (0/05>P). طول دوره حرکت اسپرم، درصد اسپرم های متحرک،pH و اسمولالیته پلاسمای سمینال در مولدین سیاه ماهی خالدار پایین تر از مولدین سیاه ماهی فلس ریز بود (0/05>P). درصورتی که سطح 11- کتوتستوسترون سرم خون در بین مولدین هر دو گروه فاقد اختلاف معنی دار بود (0/05<P). پراکنش بالای سلول های اسپرماتوزوآ در مجاری لومن مولدین سیاه ماهی خالدار نسبت به مولدین سیاه ماهی فلس ریز حاکی از فعال بودن بیش تر بیضه از لحاظ تولید اسپرم در طی فصل تولیدمثل و در درجه حرارت 21 درجه سانتی گراد می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_91620_ef5ace379b637ac8022b13d3b4351bb1.pdf
2019-04-21
211
216
سیاه ماهی
استروئیدهای جنسی
پارامترهای کیفی اسپرم
رودخانه قشلاق سنندج
زهرا
سعیدی کیا
z.saeidikeya@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه کردستان، سنندج، ایران
AUTHOR
وحید
زادمجید
zadmajid@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه کردستان، سنندج، ایران
LEAD_AUTHOR
عبدلی، ا.، 1378. ماهیان آب های داخلی ایران. تهران. موزه طبیعت و حیات وحش ایران. 377 صفحه.
1
زادمجید، و.، 1395. بررسی شاخص های تولیدمثلی بین گروه های سنی دو و سه ساله جنس نر سیاه ماهی خالدار Capoeta trutta رودخانه قشلاق سنندج در فصل تولیدمثل. نشریه پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. دوره 4، شماره 4، صفحات 55 تا 66.
2
لرستانی، ر.؛ احمدی، م.ر. و کلباسی، م.، 1385. اثر سن مولدین نر قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) بر مدت زمان تحرک اسپرم، میزان اسپرماتوکریت و چشم زدگی. مجله علمی شیلات ایران. دوره 15، شماره 1، صفحات 119 تا 128.
3
Alavi, S.M.H.; Rodina, M.; Policar, T.; Kozak, P.; Psenicka, M. and Linhart, O., 2007. Semen of Perca fluviatilis L: Sperm volume and density, seminal plasma indices and effects of dilution ratio, ions and osmolality on sperm motility. Theriogenology. Vol. 68, pp: 276-283.
4
Alavi, S.M.H.; Linhart, O.; Coward, K. and Rodina, M., 2008. Fish spermatology: implication for aquaculture management (In: Alavi, S.M.H.; Cosson, J.; Coward, K. and Rafiee, G., eds.) Fish spermatology. Alpha Science Ltd, Oxford. 462 p.
5
Bahrami kamangar, B.; Ghaderi, E. and Hossinpour, H., 2012. The fish biodiversity of Gheshlagh River (Sanandaj, Iran), a tributary of Tigris basin with occurrence of Rutilus kutum and Hemiculter leucisculus. The GIAN International in Symposium on Biodiversity in Zagrus Ragion, 5-6 may, Tehran, Iran.
6
Billard, R.; Cosson, G.; Perchec, G. and Linhart, O., 1995. Biology of sperm and artificial reproduction in carp. Aquaculture. Vol. 129, pp: 95-112.
7
Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology. South Asian publishers. New Dehli. 157 p.
8
Blazer, V.S., 2002. Histopathological assessment of gonadal tissue in wild fishes. Fish Physiology and biochemistry. Vol. 26, pp: 85-101.
9
Butts, I.A.E.; Love, O.P.; Farwell, M. and Pitcher, T.E., 2012. Primary and secondary sexual characters in alternative reproductive tactics of chinook salmon: associations with androgens and the maturation-inducing steroid. General and Comparative Endocrinology. Vol. 175, pp: 449-456.
10
Coad, B.W., 2010. Freshwater fishes of Iraq. Pensoft publishers, Sofia, Moscow. 274 p.
11
Duarte, M.; Borja, A.; Carstensen, J.; Elliott, M.; Krause Jensen, D. and Marba, N., 2016. Paradigms in the recovery of estuarine and coastal ecosystems. Estuaries and Coasts. Vol. 38, pp: 1202-1212.
12
Haddy, J.A. and Pankhurst, N.W., 2000. The efficacy of exogenous hormones in stimulating changes in plasma steroids and ovulation in wild black bream, Acanthopagrus butcheri is improved by treatment at capture. Aquaculture. Vol. 191, pp: 351-366.
13
Lahnsteiner, F.; Berger, B.; Weismann, T. and Patzner, R.A., 1996. Motility of spermatozoa of Alburnus alburnus (Cyprinidae) and its relationship to seminal plasma composition and sperm metabolism. Fish Physiology Biochemistry. Vol. 15, pp: 167-179.
14
Liley, N.R.; Tamakee, P.; Tsai, R. and Hoysak, D.J., 2002. Fertilization dynamics in Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): effect of male age, social experience, and sperm concentration and motility on in vitro fertilization. Canadian J of Fisheries and Aquatic Science. Vol. 59, pp: 144-152.
15
Lorenzen, K.; Beveridge, M.C.M. and Mange, M., 2012. Cultured fish: integrative biology and management of domestication and interactions with wild fish. Biological Reviews. Vol. 87, pp: 639-660.
16
Mohagheghi, A.; Policar, T. and Lahnsteiner, F., 2015. Fish oocyte ageing and its effect on egg quality. Reviews in Fisheries Science and Aquaculture. Vol. 23, pp: 302-314.
17
Mylonas, C.C.; Fostier, A. and Zanuy, S., 2010. Broodstock management and hormonal manipulation of fish reproduction. General and Comparative Endocrinology. Vol. 165, pp: 516-534.
18
Penaranda, D.S.; Perez, L.; Gallego, V.; Jover, M.; Tveiten, H.; Baloche, S.; Dufour, S. and Asturiano, J.F., 2010. Molecular and physiological study of the artificial maturation process in European eel males: from brain to testis. General and Comparative Endocrinology. Vol. 166, pp: 160-171.
19
Rurangwa, E.; Kime, D.E.; Ollevior, F. and Nash, J.P., 2004. The measurement of sperm motility and factors affecting sperm quality in cultured fish. Aquaculture. Vol. 234, pp: 1-28.
20
Saydur, R.M.D.; Takemura, A. and Takano, K., 2000. Annual changes in testicular activity and plasma steroid hormones in the golden rabbit fish siganus guttatus (Bloch). Fisheries science. Vol. 66, pp: 894-900.
21
Vuthiphandchai, V. and Zohar, Y., 1999. Age-related sperm quality of captive striped bass Morone saeatilis. Journal of World Aquaculture Society. Vol. 30, pp: 65-72.
22
Zadmajid, V., 2016. Comparative effects of human chorionic gonadotropin (HCG) and Ovaprim™ (sGnRHa + domperidone) on the reproductive characteristics of wild caught male Longspine scraper, Capoeta trutta. Aquaculture. Vol 463, pp: 7-15.
23
Zadmajid, V.; Mirzaee, R.; Hoseinpour, H.; Vahedi, N. and Butts, I.A.E., 2017. Hormonal induction of ovulation using Ovaprim™ [(D-Arg6, pro9 Net)-sGnRH + domperidone] and its impact on embryonic development of wild-caught Longspine scraper, Capoeta trutta. Animal Reproduction Science. Vol. 187, pp: 79-90.
24
Zadmajid, V.; Bashiri, S.; Sharafi, N. and Butts, IAE., 2018. Effect of hCG and Ovaprim™ on reproductive characteristics of male Levantine scraper, Capoeta damascina (Valenciennes, 1842). Theriogenology. Vol. 15, pp: 45-56.
25
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی علل احتمالی تلفات ماهی کپور دریایی (Cypirnus carpio) پرورش یافته در حصار توری در خلیج گرگان
در این تحقیق علل احتمالی تلفات ماهیان کپور دریایی پرورشی در حصار توری واقع در خلیج گرگان در دو تراکم 2 و 4 قطعه در مترمربع بررسی گردید. طی این بررسی که از اردیبهشت 1391 تا خرداد 1392 بود، با افزایش دمای آب (به 30/8-29 سانتی گراد) در نیمه دوم مرداد ماه تلفات ماهیان شروع شد. علایم بالینی در ماهیان بیمار شـامل بی حالی، شنا در سطح آب، تیرگی رنگ، اتساع محوطه بطنی، بیرون زدگی یک طرفه یا دوطرفه چشم و خونریزی در سطح بدن بود. تعداد 50 عدد ماهی درحال مرگ به آزمایشگاه منتقل و از کلیه و کبد آن ها در محیط TSA (تریپتوز سو آگار) کشت تهیه و پس از گرمخانه گذاری پرگنه های خالص با استفاده از آزمایشات روش های تشخیصی شناسایی گردیدند. نتایج آزمایشات تشخیصی باکتری شناسی وجود آئروموناس هیدروفیلا را تایید کرد. هم چنین نتایج آزمایش آنتی بیوگرام، حساسیت باکتری به آنتی بیوتیک آنروفلوکساسین را نشان داد. جهت مقایسه تلفات در دو تیمار از آزمون های غیرپارامتریک از آزمون Man-Witney و جهت مقایسه زمان های مختلف در هر یک از تراکم ها از آزمون Kruskal-Walis استفاده شد. نتایج آزمون مقایسه های دوتایی مستقل (Man-Whitney) نشان دهنده عدم تفاوت معنی دار میان دو سطح تراکم (2 و 4 عدد در مترمربع) در هریک از ماه های مورد مطالعه بود.
http://www.aejournal.ir/article_91655_86b06562b416c8d71838281e61040b61.pdf
2019-04-21
217
224
باکتری آئروموناس
اگزوفتالمی
آنتی بیوتیک
کپور دریایی
کامران
عقیلی
k_aghili33@yahoo.com
1
مرکزتحقیقات ذخایر آبزیان آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
عباسعلی
آقایی مقدم
aghaeifishery@gmail.com
2
مرکزتحقیقات ذخایر آبزیان آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، گرگان، ایران
AUTHOR
سید محمود
عقیلی
maghili272@gmail.com
3
مرکزتحقیقات ذخایر آبزیان آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، گرگان، ایران
AUTHOR
سارا
حق پرست
sarah_haghparast@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران
AUTHOR
احمدی،ک.؛ میرواقفی، ع.؛ بنایی، م. و موسوی، م.، 1390. مطالعه فاکتورهای خونی و آسیب شناسی بافتی ناشی از آئروموناس هیدروفیلا (Aeromonase hydrophila) در قزل آلای رنگین کمان. نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 64، شماره 3، صفحات 217 تا 227.
1
اخلاقی، م.، 1377. نقش برخی عوامل استرس زا در ظهورعفونت های ناشی از آئروموناس هیدروفیلا (Aeromonase hydrophila) در کپور ماهیان پرورشی. مجله علمی شیلات ایران. سال 7، شماره 4، صفحات 1 تا 8.
2
اخلاقی، م. و وفایی، س.، 1381. بررسی بیماری زایی آئروموناس هیدروفیلا در ماهیان آکواریومی. مجله تحقیقات دامپزشکی ایران دانشگاه شیراز. دوره 3، شماره 1، صفحات 87 تا 82.
3
بهروزی، ش.، 1382. گزارش نهایی طرح تحقیقاتی بررسی آلودگی های انگلی و باکتریایی در مزارع پرورش ماهی سردابی و گرمابی استان مازندران. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی ایران. 80 صفحه.
4
پیغان، ر.؛ طولابی دزفولی، ز.؛ موری بختیاری، ن.؛ آهنگرزاده، م. و حق پرست، م.، 1395. گزارش موردی سپتی سمی باکتریایی ناشی از آئروموناس هیدروفیلا به همراه آلودگی شدید به هگزامیتا و کرم کاپیلاریا در فرشته ماهی. نشریه دامپزشکی پژوهش وسازندگی. شماره 111، صفحات 117 تا 121.
5
پیغان، ر. و اسماعیلی، ف.، 1372. آلودگی ماهی کپور علف خوار به ارگانیسم های شبه آئروموناس های متحرک. مجله علمی شیلات ایران. سال 6، شماره 2، صفحات 1 تا 8.
6
خوال، ع.، 1388. بررسی کشت توام اردک ماهی با کپورماهیان پرورشی. ناشر موسسه تحقیقات شیلات ایران. 125 صفحه.
7
رحمتی اندانی، ح.؛ تکمه چی، ا.؛ مشکینی، س. و ابراهیمی، ه.، 1389. افزایش مقاومت ماهی قزل آلای رنگین کمان در برابر عفونت با آئروموناس هیدروفیلا ویرسینیا روکری با استفاده از لاکتوباسیل های جدا شده از روده ماهی کپورمعمولی. مجله دامپزشکی ایران. سال 7، شماره 2، صفحات 26 تا 35.
8
رضویلر، و.؛ حسنی طباطبایی، ع. و آذری تاکامی، ق.، 1360. بررسی نقش بیماری زایی آئروموناس هیدروفیلا در بعضی از بیماری های ماهی. نامه دانشکده دامپزشکی. دوره 37، شماره2، صفحات 21 تا 37.
9
سالنامه آماری سازمان شیلات ایران. 1395. انتشارات سازمان شیلات ایران. 33 صفحه.
10
ستاری، م. و روستایی، م.، 1378. بهداشت ماهی. جلد اول. نویسنده جرج پست. انتشارات دانشگاه گیلان. 284 صفحه.
11
ستاری، م.، 1387. بهداشت و بیماری های آبزیان. انتشارات حق شناس. 453 صفحه.
12
سلطانی، م.، 1375. بیماری های باکتریایی ماهی (ترجمه) انتشارات سازمان دامپزشکی کشور با همکاری موسسه نشر جهاد. 454 صفحه.
13
شادنوش، غ. و پیرعلی، ا.، 1395. کنترل کیفیت برخی از جیره های غذایی ماهی قزل آلای رنگین کمان در استان چهارمحال و بختیاری. مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 71، شماره 3، صفحات 263 تا 269.
14
صمدزاده، م.، 1373. پن کالچر در مرداب انزلی. مرکز آموزش و تحقیقات شیلاتی استان گیلان. 32 صفحه.
15
عقیلی، ک.؛ خوشباوررستمی، ح.؛ یلقی، س.؛ عقیلی نژاد، س.م.؛ معاضدی، ج.؛ حامی طبری، ا.؛ قربانی، ر.؛ تازیکه، ا.؛ ایری، ی.؛ قرهوی، ب.؛ عقیلی، س.م.؛ محمدخانی، ح.؛ کر، ن.م.؛ درویشی، غ.؛ میرهاشمی رستمی، س.ا. و منصوری، ب.، 1393. بررسی امکان پرورش بچه ماهی کپور (Cypirnus carpio) شرایط محصور در خلیج گرگان تا سن بلوغ (مولدسازی). گزارش نهایی موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 100 صفحه.
16
علیشاهی، م.؛ سلطانی، م. و زرگر، ا.، 1388. بررسی باکتریایی تلفات ماهی آمور (Ctnopharyngodon idella) در استان خوزستان. مجله دامپزشکی ایران. دوره 5، شماره 1، صفحات 25 تا 34.
17
هدایت، م.، 1376. تکثیر و پرورش ماهیان گرمابی، ویژه دوره طراحی مراکز تکثیر و پرورش. 120 صفحه.
18
Adanir, D.O.R. and Turutoglu, H., 2007. Isolation and antibiotic susceptibility of Aeromonas hydrophila in a carp (Cyprinus carpio) hatchery farm. Bulletin of theVeterinary Institute in Pulawy. Vol. 51, pp: 361-364.
19
Austin, B. and Austin, D.A., 2007. Bacterial Fish Pathogenes,4th ed. Chichester, UK: Springer- Praxis. 81 p.
20
Buller, N.B., 2004. Bacteria from fish and other aquatic animals: a practical identification manual. CABI publishing. 361 p.
21
Halmer, J.E., 1988. Fish nutrition. 2nd ed. Sandieo Academic press. 384 p.
22
Jester, D.B., 1974. Life history, ecology and management of the carp Cyprinus carpio Linnaeus .in Elephant Butte Lake.New Mexico State Univ. Ag. Exp. sta. Res. Rep. pp: 80-273.
23
Lee, S.; Kim, S.; Oh, Y. and Lee, Y., 2002. Characterization of Aeromonas hydrophila, isolated from rainbow trouts in Korea. The Journal of Microbiology. Vol. 38, No. 1, pp: 1-7.
24
Holt, J. and Krieng, N., 1994. Bergey’s Manual of Determinative Bacteriology. 9th Edition, The Williams comp. 787 p.
25
Nielsen, M.E.; Høi, L.; Schmidt, A.S.; Qian, D.; Shimada, T.; Shen, J.Y. and Larsen, J.L., 2001. Is Aeromonas hydrophila the dominant motile aeromonas species that causes disease outbreaks in aquaculture production in the Zhejiang province of china? Disease of Aquatic Organisms. Vol. 46, No. 22, pp: 23-29.
26
NRC. 2011. Nutrient Requirement of Fish and Shrimp. Committee on Animal Nutrition, Board 32, on Agriculture, National Research Council, National Academy press, Washington, D.C., USA. 392 p.
27
Porteen, K.; Agarwal, R.K. and Bhilegaonkar, K.N., 2006. PCR Based Detection of Aerominas from Milk Samplees. Journal of Food Technology. Vol. 4, No. 2, pp: 111-115.
28
Rey, A.N.; Verján, H.W.; Ferguson, C. and Iregui, I., 2009. Pathogenesis of Aeromonas hydrophila strain KJ99 infection and its extracellular products in two species of fish. Veterinary Record. Vol. 164, pp: 493-499.
29
ORIGINAL_ARTICLE
اثر مکمل غذایی آستاگزانتین بر عملکرد رشد، بقاء و برخی شاخص های ایمنی ذاتی لارو قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
آبزی پروری متراکم منجر به افزایش استرس، شیوع بیماری باکتری و درنهایت تلفات می گردد. تحقیق حاضر به منظور بررسی اثر مکمل غذایی آستاگزانتین بر عملکرد رشد، بقاء و برخی شاخص های ایمنی لارو قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) به مدت 60 روز صورت گرفت. به این منظور، تعداد 360 قطعه لارو قزل آلای رنگین کمان با میانگین وزنی 0/01±0/13 گرم، در یک طرح کاملاً تصادفی به 4 تیمار آزمایشی و 3 تکرار (10 قطعه در هر تکرار) تقسیم شدند و به ترتیب با رژیم های غذایی حاوی 0، 50، 100 و 150 میلی گرم آستاگزانتین بر کیلوگرم غذا مورد تغذیه قرار گرفتند. نتایج حاصله نشان داد که رژیم های حاوی آستاگزانتین بر کیلوگرم غذا، تفاوت معنی داری در شاخص های رشد، بقاء و ایمنی ذاتی در مقایسه با تیمار شاهد نشان دادند (0/05>P). بالاترین وزن نهایی، افزایش وزن به دست آمده، ضریب رشد ویژه، نسبت کارایی پروتئین، بقاء، پروتئین تام و گلوبولین در تیمار حاوی 100 میلی گرم آستاگزانتین بر کیلوگرم غذا مشاهده شد که با بقیه تیمارها دارای تفاوت معنی دار بود (0/05>P). بیش ترین فعالیت لیزوزیم و آلیومین در تیمارهای حاوی 150 میلی گرم آستاگزانتین بر کیلوگرم غذا مشاهده شد که با بقیه تیمارها تفاوت معنی داری را نشان دادند (0/05>P). در مجموع براساس نتایج این تحقیق، افزودن 100 میلی گرم مکمل غذایی آستاگزانتین بر کیلوگرم جیره غذایی ماهی قزل آلای رنگین کمان به منظور بهبود شاخص های رشد، بقاء و پاسخ های ایمنی ذاتی در این ماهی پیشنهاد می شود.
http://www.aejournal.ir/article_91933_81b27a02e06206b25c08d8b089d3107c.pdf
2019-04-21
225
230
ماهی قزل آلای رنگین کمان
آستاگزانتین
شاخص های رشد
ایمنی ذاتی
محسن
علی
mani_a777 @yahoo.com
1
گروه بهداشت و بیماری آبزیان، دانشکده دامپزشکی شیراز، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
پریا
اکبری
paria.akbary@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
LEAD_AUTHOR
امین
غلام حسینی
3
گروه بهداشت و بیماری آبزیان، دانشکده دامپزشکی شیراز، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
محمد سعید
فریدونی
paak1355@gmail.com
4
گروه بهداشت و بیماری آبزیان، دانشکده دامپزشکی شیراز، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
Aathi, K.; Ramasubramanian, V.; Uthayakumar, V. and Munirasu, S., 2013. Effect of supplemented diet on survival, growth, hematological, biochemical and immunological responses of Indian major carp labeo rohita. InternationalResearchJournalofPharmacy. Vol. 4. No. 5, pp: 141-147.
1
Ahmadi, S.; Farhangi, M.; Rafii, G.R. and Ghaednia, B., 2008. Effect of different levels of astaxsnthin on growth parameters and survival in Litopenaeus vannamei. Journal of Marine Sciences and Technology. Vol. 1-2, pp: 1-12.
2
Beutner, S.; Bloedorn, B.; Frixel, S.; Blanco, I.H.; Hoffman, T. and Martin, H., 2001. Quantitative assessment of antioxidant properties of natural colorants and phytochemicals: carotenoids, flavonoids, phenols and indigoids. The role of β-carotene in antioxidant functions. J of the Science of Food Agriculture. Vol. 81, pp: 559-568.
3
Burtis, C.A.; Ashwood, E.R. and Brund, D.E., 1994. Tietz Textbook of Clinical Chemistry (5thed.).W.B.Sunders Company. Philadelphia. USA. 560 p.
4
Chein, Y.H. and Jeng, S.C., 1992. Pigmentation of kuruma prawn, Penaeus japonicus bate, by various pigment sources and levels and feeding regimes. Aquaculture. Vol. 102, pp: 333-346.
5
Chew, B.P.; Wong, M.W.; Park, J.S. and Wong, T.S., 1999. Dietary b-carotene and astaxanthin but not canthaxanthin stimulate splenocyte function in mice, Anticancer Research. Vol. 19, pp: 5223-5227
6
Christiansen, R.; Lie, Q. and Torrissen, O.J., 1994. Effect of astaxanthin and vitamin A on growth and survival during first feeding of Atlantic salmon, Salmo salar L. Aquaculture and Fisheries Management. Vol. 25, pp: 903-914.
7
Ellis, A.E., 1990. Lysozyme Assays:In Stolen JS, Fletcher TC, Anderson DP, Roberson BS,Van Muiswinkel WB, editors.Techniques in :Fish Immunology. Fair Haven, NJ: SOS Publications. 650 p.
8
Faghani, T.; Soltani, M.; Shamsae, M. and Matinfar, A., 2013. The effect of dietary natural Astaxanthin (Haematococcus pluvialis) on the growth parameters, carcases and liver chemical composition injuvenile beluga (Huso huso Linnaeus, 1758). Journal of Marine Biology, Islamic Azad University, Ahvaz Branch. Vol. 5, pp: 69-78.
9
Farhangi, M.; Ahmadi, S.; Rafii, G.R.; ghaednia, B. and Taghavi, R., 2013. Effect of different levels of dietary astaxantin on biochemical parameters and non- specific immune in Litopenaeus vannamei against low oxygen stress J of Marine Sciences and Technology. Vol. 2, pp: 103-114.
10
Guerin, M.; Huntley, M.E. and Olaizola, M., 2003. Haematococcus astaxanthin: applications for human health and nutrition. Trends Biotechnology. Vol. 21, pp: 210-216.
11
Harikrishnan, R.; Kim, J.; Balasundaram, C. and Heo, M., 2012. Immunomodulatory effects of chitin and chitosan enriched diets in Epinephelus bruneus against Vibrio alginolyticus infection. Aquaculture. Vol. 326, pp: 46-52.
12
Hussein, G.; Sankawa, U.; Goto, H.; Matsumoto, K. and Watanabe, H., 2006. Astaxanthin, a carotenoid with potential in human health and nutrition. Journal of Natural Products. Vol. 69, pp: 443-449.
13
Ilyasov, Y. and Golovin, P., 2003. The effect of NatuRose® on growth, survival and physiological state of twoyear-old marketable sturgeons. On file at Cyanotech Corporation.
14
Kumar, S.; Sahu, N.P.; Pal, A.K.; Choudhury, D.; Yengkokpam, S. and Mukherjee, S.C., 2005. Effect of dietary carbohydrate on haematology, respiratory burst activity and histological changes in Labeo rohita juveniles. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 19, pp: 331-344.
15
Li, M.; Wu, W.; Zhou, P.; Xie, F.; Zhou, Q. and Mai, K., 2014. Comparison effect of dietary astaxanthin and Haematococcus pluvialison growth performance, antioxidant status and immune response of large yellow croaker Pseudosciaena crocea. Aquaculture. Vol. 434, pp: 227-232.
16
Liu, F.; Shi, H.; Guo, Q.; Yu, Y.; Wang, A.; Lv, F. and Shen, W., 2016. Effects of astaxanthin and emodin on the growth, stress resistance and disease resistance of yellow catfish (Pelteobagrus fulvidraco). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 51, pp: 125-135.
17
Merchie, G.; Kontara, E.; Lavens, P.; Robles, R.; Kurmaly, K. and Sorgeloos, P., 1998. Effect of vitamin C and astaxanthin on stress and disease resistance of postlarval tiger shrimp, Penaeus monodon (Fabricius). Aquacultue Research. Vol. 29, pp: 579-589.
18
Nakano, T.; Kanmuri, T.; Sato, M. and Takeuchi, M., 1999. Effect of astaxanthin rich red yeast (Phaffia rhodozyma) on oxidative stress in rainbow trout Biochimica et Biophysca Acta. Vol. 426, pp: 119-125.
19
Niu, J.; Tian, L.X.; Liu, Y.J.; Yang, H.J.; Ye, C.X.; Gao, W. and Mai, K.S., 2009. Effect of dietary astaxanthin on growth, survival and stress tolerance of postlarval shrimp,Litopenaeus vannamei. Journal of World Aquacultue Society. Vol. 40, pp: 795-802.
20
Ravelo, C.; Magariños, B.; Herrero, M.C.; Costa, L.; Toranzo, A.E. and Romald, J.L., 2006. Use of adjuvanted vaccines to lengthen the protection against Lactococcusis in rainbow trout.Aquaculture. Vol. 251, pp: 153-158.
21
Rehulka, J., 2000. Influence of astaxanthin on growth rate, condition, and some blood indices of rainbow trout,Oncorhynchus mykiss Aquaculture. Vol. 190, pp: 27-47.
22
Sugita, H.; Okano, R.; Suzuki, Y.; Iwai, D.; Mizukami, M.; Akiyama, N. and Matsuura, S., 2002. Antibacterial abilities of intestinal bacteria from larvae and juvenile Japanese flounder against fish pathogens.FisheriesScience. Vol.2, No. 68, pp: 1004-1011.
23
Wahli, T.; Verlhac, V.; Griling, P.; Gabaudan, J. and Aebischer, C., 2003. Influence of dietary vitamin C on the wound healing process in rainbow trout (Oncorhyncus mykiss) Aquaculture. Vol. 225, pp: 371-386.
24
ORIGINAL_ARTICLE
اثر ریزپوشانی لاکتوباسیلوس پلانتاروم با ریزذرات آلژینات/کیتوزان بر شاخص های رشد، تغذیه و فاکتورهای خونی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
مطالعه حاضر به منظور مقایسه تأثیر باکتری Lactobasillos plantarumریزپوشانی شده (با ریز ذرات کیتوزان/ آلژینات) و معمولی (بدون ریزپوشانی) بر شاخص های رشد، تغذیه و فاکتورهای خونی در ماهی قزل آلای رنگین کمان Oncorhynchus mykissانجام شد. 480 عدد بچه ماهی با میانگین وزنی 1/2±15 در چهار گروه (با سه تکرار) به مدت 8 هفته به ترتیب با جیره های آزمایشی شامل: لاکتوباسیلوس پلانتاروم بدون ریزپوشانی (تیمار1)، لاکتوباسیلوس پلانتاروم ریزپوشانی شده با کیتوزان و آلژینات (تیمار2)، کیتوزان و آلژینات بدون باکتری (تیمار3) و فقط خوارک پایه (گروه شاهد) تغذیه شدند. نتایج این تحقیق نشان داد که بهترین ضریب رشد ویژه و فاکتور وضعیت، مربوط به تیمار2 بود، البته ضریب تبدیل غذایی و کارایی پروتئین نیز در تیمار2 و3 نسبت به گروه شاهد بهبود نشان داد، هرچند این افزایش از نظر آماری معنیدار نبود. هم چنین بیش ترین میزان هماتوکریت، هموگلوبین و حجم متوسط گلبول قرمز در تیمار 2 مشاهده شد که هماتوکریت با گروه شاهد اختلاف معنی داری داشت (0/05˂P). بیش ترین تعداد گلبول های قرمز، غلظت متوسط هموگلوبین گلبول های قرمز و کم ترین مقدار غلظت متوسط هموگلوبین گلبولی در تیمار1 مشاهده شد. تعداد گلبول های سفید نیز در تیمار 3 نسبت به گروه شاهد افزایش معنی داری را نشان داد. بنابراین می توان بیان کرد به کارگیری پروبیوتیک لاکتوباسیلوس پلانتاروم موجب بهبود شاخص های رشد، تغذیه و فاکتورهای خونی شد ولی برای توصیه این روش جهت تجویز پروبیوتیک در ماهی قزل آلای رنگین کمان بررسی بیش تری لازم است.
http://www.aejournal.ir/article_91940_c4270a3137e299c04030fb97291fc078.pdf
2019-04-21
231
238
پروبیوتیک
تغذیه
لاکتوباسیوس پلانتاروم
ترکیبات خونی
نانوذرات
ریزپوشانی
مریم
احمدمرادی
m.ahmadmoradi2015@gmail.com
1
بخش علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
LEAD_AUTHOR
سیاوش
سلطانیان
siyavashsoltanian@yahoo.com
2
بخش علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
مجتبی
علیشاهی
alishahimoj@gmail.com
3
بخش بهداشت و بیماریهای آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
مصطفی
اخلاقی
akhlaghi@shirazu.ac.ir
4
بخش علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
علی
شهریاری
5
گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
آزاده
یکتاسرشت
azadeh_neisi@shirau.ac.ir
6
بخش پاتولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
اسمعیلی، س.؛ سهراب وندی، س.؛ مرتضویان، س.ا.م.؛ نعمت الهی، آ.؛ شادنوش، م. و ایوانی، ج.، 1394. مروری بر کارایی ریزپوشانی پروبیوتیک ها. فصلنامه طب و تزکیه. دوره 24، شماره 3، صفحات 9 تا 22.
1
حسینی، س.ص.، 1395. ارزیابی توان پروبیوتیکی و تحریک ایمنی لاکتوباسیلوس بولگاریکوسریزپوشانی شده با آلژینات/ کیتوزان در فیل ماهی جوان Huso huso. پایان نامه دکتری تخصصی. بخش آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز. 137 صفحه.
2
رضایی مکرم، ر.؛ مرتضوی، س.ع.؛ حبیبی نجفی، م.ب.؛ شهیدی، ف. و خمیری، م.، 1389. اثر میکروانکپسولاسیون آلژینات کلسیم بر قابلیت زنده مانی لاکتوباسیلوس اسیدوفیلوس 1643PTCC در شرایط شبیه سازی شده معده و روده انسان. فصلنامه علوم و صنایع غذایی. دوره 7، شماره 2، صفحات 51 تا60.
3
ستاری، م.، 1381. کتاب ماهی شناسی(1) (تشریح و فیزیولوژی). انتشارات نقش مهر دانشگاه گیلان. صفحات 105 تا 176.
4
سهندی، ج.؛ جعفریان، ح. ا.؛ سلطانی، م. و ابراهیمی، پ. ، 1394. مطالعه شاخص های رشد و پارامترهای خون شناختی لارو قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) تغذیه شده با جیره مکمل سازی شده با بیفیدوباکترهای پروبیوتیکی. مجله علمی پژوهشی زیست شناسی جانوری تجربی. دوره 4، شماره 3. صفحات 41 تا 51.
5
قلجایی فرد، ا.؛ خارا، ح. و شناورماسوله، ع.، 1395. تأثیر باکتری (Lactobacillus plantarum) جداسازی شده از روده قزل آلای رنگین کمان استان گیلان بر شاخص های خونی و ایمنی بچه ماهی قزل آلای رنگین کمان. فیزیولوژی و تکوین جانوری. دوره 5، شماره 2، صفحات 111 تا 124.
6
محمدیان، ت.؛ قربانپور، م.؛ علیشاهی، م.؛ تابنده، م.ر. و غریبی،د.،1394. جداسازی و شناسایی بیوشیمیایی لاکتوباسیل های با توان پروبیوتیکی از روده ماهی شیربت. دامپزشکی ایران. دوره 10، شماره 2، صفحات 88 تا 98.
7
Aubin, J.; Gatesoupe, F.J.; Labbe, L. and Lebrun, L., 2005. Trial of probiotics to prevent the vertebral column compression syndrome in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture research. Vol. 36, pp: 758-767.
8
Bagheri, T.; Hedayati, S.A.; Yavari, V.; Alizadeh, M. and Farzanfar, A., 2008. Growth, Survival and gut microbial load of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fry given diet supplemented with probiotic during the two month first feeding. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 8, pp: 43-48.
9
Bani, A. and Haghi-Vayghan, A. 2011.Temporal variations in haematologicaland biochemical indices of the Caspian kutum, Rutilus frisii kutum. Journal of Ichthyol ogycal Research.Vol. 58, pp: 126-133.
10
Brunt, J. and Austin, B., 2005. Use of a probiotic to control lactococcosis and streptococosis in rainbow trout, (Oncorhynchus mykiss). Jouranl of Fish Diseases. Vol. 28, pp: 693-701.
11
Carnevali, O.; Zamponi, M.C.; Sulpizio, R.; Rollo, A.; Nardi, M.; Orpianesi, C.; Silvi, S.; Caggiano, M.; Cho, C.Y. and Kaushik, S., 1990. Nutritional energetic in fish, energy and protein utilization in rainbow trout. World Review of Nutrition and Dietetics Journal. Vol. 61, pp: 132-172.
12
Cerezuela, R.; Meseguer, J. and Esteban, M.A., 2013. Effects of dietary inulin, Bacillus subtilis and microalgae on intestinal gene expression in gilthead seabream. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 34, pp: 843-848.
13
Dimitroglou, A.; Merrifield, D.L.; Carnevali, O.; Picchietti, S.; Avella, M.; Daniels C.; Guroy, D. and Davies, S.J., 2011. Microbial manipulations to improve fish health and production -a Mediterranean perspective. Fish Shellfish Immunology. Vol. 30, pp: 1-16.
14
Feldman, B.F.; Zinkl, J.G. and Jain, N.C. 2000. Schalm's Veterinary Hematology. 5rdEd. Lippincott Williams and Wilkins, Pennsylvania, USA. pp: 1120-1126.
15
Fuller, R., 1989. Probiotics in man and animals. Journal of applied bacteriology. Vol. 66. No. 5, pp: 365-378.
16
Gatesoupe, F.J., 1999. The use of probiotics in aquaculture. Aquaculture. Vol. 180, No. 1, pp: 147-165.
17
Ghosh, K.; Sen, S.K. and Ray, A.K., 2003. Supplementation of an isolated fish gut bacterium, Bacillus circulans, in formulated diets for rohu, Labeo rohita, fingerlings. Israeli J of Aquaculture. Vol. 55, pp: 13-21.
18
Hagi, T.; Tanaka, D.; Iwamura, Y. and Hoshino, T., 2004. Diversity and seasonal changes in lactic acid bacteria in the intestinal tract of cultured freshwater fish. Aquaculture. Vol. 234, No. 1, pp: 335-346.
19
Harikrishnan, R.; Kim, J.S.; Balasundaram, C. and Heo, M.S., 2012. Immunomodulatory effects of chitin and chitosan enriched diets in Epinephelus bruneus against Vibrio alginolyticus infection. Aquaculture. Vol. 326, pp: 46-52.
20
Henry, J.B., 1996. Clinical diagnosis and management by laboratory methods. W.B. Saunders Company. 1556 P.
21
Huiyi,S.;Weiting,Y.; Meng, G.; Xiudong, L. and Xiaojun, M., 2013. Microencapsulated probiotics using emulsification technique coupled with internal or external gelation process. Carbohudrate polymers. Vol. 96, pp: 181-189.
22
Irianto, A. and Austin, B., 2002. Probiotics in aquaculture. Journal of Fish Disease. Vol. 25, pp: 633-642.
23
Iyer, R. and Hittinahalli, V., 2008. Modified Pap method to among methicillin resistant Staphylococcus aureus isolates tertiary care hospital. Journal of Medical Microbiology. Vol. 26, pp: 176-179.
24
Iwama, G. and Nakanishi, T., 1996. The Fish Immune System. Organism, Pathogen and Environment. Academic Press. 395 P.
25
Jafaryan, H.; Taati keley, M. and Nazarpoor, A.R., 2009. The study effect of probioic bacillus on growth of Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) larvae via Supplementation with meal of Daphnia magna. Journal Agricultural Science Natural Research. Vol. 16, pp: 48-59.
26
Merrififld D., Bardley G., Baker R. and Davies S., 2009. Probiotic applications for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) effects on growth performance, feed utilization, intestinal microbiota and related health criteria postantibiotic treatment. Aquaculture Nutrition.Vol. 22, pp:141-150.
27
Mortazavian, A.; Razavi, SH.; Ehsani, M.R. and Sohrabvandi, S., 2007. Principles and methods of microencapsulation of Probiotic microorganisms. Iranian Journal of biotechnology. Vol. 5, No. 1, pp:1-18.
28
Naseri,S.;Nezami Balouchi, SH.A.; Khara, H.; Farzanfar, A.; Lashtou Aghaei, GH.R. and Shakoori, M., 2008. The study of growth performance of Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss) Larvae with different levels of probiotic and iron in use of supplemented in diet. Journal of fisheries. Vol. 2, No. 3, pp: 15-20.
29
Ogino, C. and Saito, K., 1970. Protein nutrition in fish. I. The utilization of dietary protein by young carp. Bulletin of Japanese Society for the Science of Fish. Vol. 36, pp: 250-254.
30
Ohashi, Y.; Umesaki, Y. and Ushida, K. 2004. Transition of the probiotic bacteria, Lactobacillus casei strain shirota, in the gastrointestinal tract of a Pig. International Journal of Food Microbiology. Vol. 96, pp: 61-66.
31
Planas, M.; Vazquez, J.A.; Marques, J.; Peres-Lomba, R.; Gonzalez, M.P. and Murado, M., 2004. Enhancement of rotifer (Brachionus plicatilis) growth by using terrestrial lactic acid bacteria. Aquaculture. Vol. 240, pp: 313-329.
32
Pourgholam, M.A.; Khara, H.; Safari, R.; Sadati, M.A.Y. and Aramli, M.S., 2016. Hemato-Immunological Responses and Disease Resistance in Siberian Sturgeon Acipenser baerii Fed on a Supplemented Diet of Lactobacillus plantarum. Probiotics and Antimicrobial Proteins. pp: 1-9.
33
Rajikkannu, M.; Natarajan, N.; Santhanam, P.; Deivasigamani, B.; Ilamathi, J. and Janani, S., 2015. Effect of probiotics on the haematological parameters of Indian major carp (Labeo rohita). International Journal of Fisheries and Aquatic Studies. Vol. 2, No. 5, pp: 105-109.
34
Renuka, K.P.; Venkateshwarlu, M. and Naik, A.R., 2014. Effect of probiotic (Lactobacillus acidophilus) on haematological parameters of Catla catla (Hamilton). International Journal Current Microbiology and Applied Sciences. Vol. 8, pp: 326-335.
35
Shenavar Masouleh, A., 2013. Characterization of lactic acid bacteria in intestine of Persian sturgeon fingelings and their efficiency on the growth performances and some immunophysiological variable. Thesis submitted for Degree of Ph.D. Faculty of Aquatic Animal Health Veterinary Medicine, University of Tehran. 140 P.
36
Sultana,K.; Godward,G.; Reynolds, N.; Arumugaswamy, R.; Peiris, P. and Kailasapathy, K., 2000. Encapsulation of probiotic bacteria with alginate starch and evaluation of survival in simulated gastrointestinal conditions and in yoghurt. International Journal of Food Microbiology. Vol. 62, No. 1, pp: 47-55.
37
Taoka, Y.; Maeda, H.; Jo, J.Y.; Jeon, M.J.; Bai, S.C.; Lee, W.J.; Yuge, K. and Koshio, S., 2006. Growth, stress tolerance and non-specific immune response of Japanese flounder Paralichthysoliraceus to probiotics in a closed recirculating system. Fisheries Science. Vol. 72, No. 2, pp: 310-321.
38
Thrall, M.A.; Baker, D.C. and Lassen, E.D., 2005. Clinical Case Presentations forVeterinary Hematology and Clinical Chemistry. John Wiley and Sons, USA. 100 P.
39
Tuohy, K.M.; Abecia, l.; Deaville,E.R.; Fava,F.; Klinder, A. and Shen, Q., 2009. Molecular Tools for Investigating the Gut Microbiota. In Prebiotics and probiotics science and technology. Edited by D Charalampopoulos and RA Rastall. Springer. New York. Vol. 1, pp: 61-73.
40
Verschuere, L.; Rombaut, G.; Huys, G.; Dhont, J.; Sorgeloos, P. and Verstraete, W., 1999. Microbial Control of the Culture ofArtemia Juveniles through Preemptive Colonization by Selected Bacterial Strains. Applied and environmental microbiology. Vol. 65, No. 6, pp: 2527-2533.
41
ORIGINAL_ARTICLE
اثر غلظت های تحت کشنده نانوذرات نقره و نیترات نقره بر ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio. L): تغییرات خون شناسی و آنتی اکسیدانی
با توجه به کاربرد بالای نقره و هم چنین احتمال در معرض گرفتن آبزیان، امکان در معرض قرارگیری این موجودات با این فلز زیاد است. لذا این مطالعه با هدف بررسی و مقایسه اثرات تحت حاد نانوذرات نقره و نیترات نقره بر بقاء، شاخص های مختلف خونی و هم چنین آنزیم های شاخص آنتی اکسیدانی در ماهی کپورمعمولی انجام شد. ابتدا غلظت کشندگی 50% و 96 ساعته برای دو شکل نقره به دست آمد و سپس ماهیان به مدت 21 روز در معرض %15 و 30% از غلظت حاد محاسبه شده (0/4 و 0/8 میلی گرم در لیتر نانوذرات و هم چنین 0/025 و 0/045 میلی گرم در لیتر نیترات نقره) قرار گرفتند. متوسط غلظت حاد 96 ساعته برای نانوذرات نقره و نیترات نقره به ترتیب 0/02±0/29 و 0/05±0/15 میلی گرم در لیتر بود. نتایج نشان دهنده اختلالات مختلفی در شاخص های خون شناسی ازجمله کاهش تعداد گلبول های قرمز و افزایش تعداد گلبول های سفید بود. هم چنین آنزیم SOD در اکثر تیمارهای درمعرض قرار گرفته در مقایسه با گروه شاهد القاء شد. این مطالعه نشان داد نیترات نقره در غلظت های پایین تری اثرات کشندگی خود را اعمال می کند و هر دو شکل نقره تقریباً به شکل یکسان باعث تغیییرات در فاکتورهای ایمنی ذاتی و شاخص های استرس اکسیداتیو در ماهیان درمعرض قرار گرفته شدند اما در آنزیم SOD این تغییرات در گروه های مواجه شده با نیترات نقره کمی بیش تر بود.
http://www.aejournal.ir/article_91951_be29b0b04ebc0f0cad782c0fbc8e00e6.pdf
2019-04-21
239
246
ماهی
حالت یونی و نانوذرات نقره
سم شناسی
استرس
خیراله
خسروی کتولی
khosravi.kh@ut.ac.ir
1
گروه تکثیر و پرورش آبزیان، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
علی
شعبانی
alishabani@gmail.com
2
گروه تکثیر و پرورش آبزیان، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
حامد
پاک نژاد
h.kolangi@gmail.com
3
گروه تکثیر و پرورش آبزیان، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
محمد رضا
ایمانپور
imanpour.m@gmail.com
4
گروه تکثیر و پرورش آبزیان، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
Baalousha, M.; Manciulea, A.; Cumberland, S.; Kendall, K. and Lead, J.R., 2008. Aggregation and surface properties of iron oxide nanoparticles: influence of pH and natural organic matter. Environmental Toxicology and Chemistry. Vol. 27, Vol. 9, pp: 1875-1882.
1
Bilberg, K.; Hovgaard, M.B.; Besenbacher, F. and Baatrup, E., 2011. In vivo toxicity of silver nanoparticles and silver ions in zebrafish (Danio rerio). Journal of toxicology. Vol. 2012, pp: 1-9.
2
Bilberg, K.; Malte, H.; Wang, T. and Baatrup, E., 2010. Silver nanoparticles and silver nitrate cause respiratory stress in Eurasian perch (Perca fluviatilis). Aquatic Toxicology. Vol. 96, pp: 159-165.
3
Blaser, S.A.; Scheringer, M.; MacLeod, M. and Hungerbuhler, K., 2008. Estimation of cumulative aquatic exposure and risk due to silver: Contribution of nano functionalized plastics and textiles. Science of the Total Environment. Vol. 390, pp: 396-409.
4
Buffet, P.E.; Zalouk-Vergnoux, A.; Châtel, A.; Berthet, B.; Métais, I.; Perrein-Ettajani, H.; Luna-Acosta, A.; Thomas-Guyon, H.; Risso-de Faverney, C.; Guibbolini, M.; Gilliland, D.; Valsami-Jones, E. and Mouneyrac, C., 2014. A marine mesocosm study on the environmental fate of silver nanoparticles and toxicity effects on two endobenthic species: The ragworm Hediste diversicolor and the bivalve mollusc Scrobicularia plana. Science of the Total Environment. Vol. 47, pp: 1151-1159.
5
Campbell, T.W. and Ellis, C.K., 2007. Avian and exotic animal hematology and cytology. Ames (IA).
6
Dowling, A., 2006. September. Nanoscience and nanotechnologies. In an international symposium on the nature, purposes, ethics and politics of evidence in a democracy. 61 p.
7
Fulton, M. and Key, H., 2001. Acetylcholinesterase inhibition in estuarine fish and invertebrates as an indicator of organophosphorus insecticide exposure and effects. Environmental Toxicology and Chemistry. Vol. 20, No. 1, pp: 37-45.
8
Gottschalk, F.; Sonderer, T.; Scholz, R.W. and Nowack, B., 2009. Modeled environmental concentrations of engineered nanomaterials (TiO2, ZnO, Ag, CNT, fullerenes) for different regions. Environment science technology.
9
Vol. 43, pp: 9216-9222.
10
Griffitt,R.J.;Brown‐Peterson, N.J.; Savin, D.A; Manning, C.S.; Boube, I.; Ryan, R. and Brouwer, M., 2012.Effects of chronic nanoparticulate silver exposure to adult and juvenile sheepshead minnows. Environmental Toxicology and Chemisty. Vol. 31, pp: 160-167.
11
Grillo, R.: Rosa, A.H. and Fraceto, L.F., 2015. Engineered nanoparticles and organic matter: a review of the state of the art. Chemosphere. Vol. 119, pp: 608-619.
12
Hao, L.; Chen, L.; Hao, J. and Zhong, N., 2013. Bioaccumulation and sub-acute toxicity of zinc oxide nanoparticles in juvenile carp (Cyprinus carpio): a comparative study with its bulk counterparts. Ecotoxicology Environmental Safty. Vol. 91, No. 52, pp: 52-60.
13
Hao, L.; Chen, L.; Hao, J. and Zhong, N., 2013. Bioaccumulation and sub-acute toxicity of zinc oxide nanoparticles in juvenile carp (Cyprinus carpio): A comparative study with its bulk counterparts. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 91, pp: 52-60.
14
Hedayati, A.; Jahanbakhshi, A. and Ghader-Ramazi, F., 2013. Aquatic Toxicology. Published by Gorgan University of Agricultural Sciences and Natural. 210 p.
15
Houston, A.H., 1997. Are the classical hematological variables acceptable indicators of fish health?. Transactions of the American Fisheries Society. Vol. 126, pp: 879-894.
16
Karan, V.; Vitorović, S.; Tutundžić, V. and Poleksić, V., 1998. Functional enzymes activity and gill histology of carp after copper sulfate exposure & recovery. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 40, No. 12, pp: 49-55.
17
Kashiwada, S., 2006. Distribution of nanoparticles in the see-through medaka (Oryzias latipes). Environmental Health Perspective. Vol. 114, 1697 p.
18
Katuli,K.K.; Massarsky, A.; Hadadi, A.and Pourmehran, Z., 2014. Silver nanoparticles inhibit the gill Na+/K+ ATPase and erythrocyte AChE activities and induce the stress response in adult zebrafish (Danio rerio). Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 106, pp: 173-180.
19
Kehrer, J.P., 1993.Free radicals as mediators of tissue injury and disease. Critical reviews in toxicology. Vol. 23, No. 1, pp: 21-48.
20
Keller, A.A.; McFerran, S.; Lazareva, A. and Suh, S., 2013.Global life cycle releases of engineered nanomaterials. J of Nanoparticle Research. Vol. 15, pp: 1-17.
21
Kim, J.; Park, Y.; Yoon, T.H.; Yoon, C.S. and Choi, K., 2010. Phototoxicity of CdSe/ ZnSe quantum dotswith surface coatings of 3-mercaptopropionic acid or tri-n octylphosphine oxide/gum arabic in Daphnia magna under environmentally relevant UV-B light. Aquatic Toxicology. Vol. 97, pp:116-124.
22
Larsson, Å.; Lehtinen, K.J. and Haux, C., 1980. Biochemical and hematological effects of a titanium dioxide industrial effluent on fish. Bulletin of Environmental Contamination & Toxicology. Vol. 25, No, 427, pp: 427-435.
23
Muralisankar, T.; Bhavan, P.S.; Radhakrishnan, S.; Seenivasan, C.; Manickam, N. and Srinivasan, V., 2014. Dietary supplementation of zinc nanoparticles and its influence on biology, physiology and immune responses of the freshwater prawn, Macrobrachium rosenbergii. Biological trace element research. Vol. 160, pp: 56-66.
24
Oruç, E.Ö. and Usta, D., 2007. Evaluation of oxidative stress responses and neurotoxicity potential of diazinon in different tissues of Cyprinus carpio. Environmental Toxicology and Pharmacology. Vol. 23, No. 1, pp: 48-55.
25
Rajan, M.; Archana, J.; Ramesh, R. and Keerthika, V., 2017. The present study deals with the toxicity zinc oxide nanoparticles in tilapia Oreochromis mossambicus. zinc oxide nanoparticles were synthesized by chemical precipitation method and characterized using SEM, EDAX, FTIR and XRD. Toxicity tests were conducte. PARIPEX Indian Journal of Research. Vol. 5.
26
Rozan, T.F.; Hunter, K.S. and Benoit, G., 1995.Silver in fresh water: Sources, transport and fate in Connecticut riversed.^eds. Proceedings of the 3th Argentum International Conference on the Transport, Fate and Effects of Silver in the Environment. pp: 181-184.
27
Saravanan, M.; Kumar, K.P. and Ramesh, M., 2011. Haematological and biochemical responses of freshwater teleost fish Cyprinus carpio during acute and chronic sublethal exposure to lindane. Pesticide Biochemistry and Physiology. Vol. 100, No. 3, pp: 206-211.
28
Schmidt,C.W.,2009. Nanotechnology-related environmental, health and safety research: examining the national strategy. Environmental Health Perspectives. Vol. 117, No. 4, pp: A158-A161.
29
Song, L.; Vijver, M.G.; Peijnenburg, W.J.; Galloway, T.S. and Tyler, C.R., 2015. A comparative analysis on the in vivo toxicity of copper nanoparticles in three species of freshwater fish. Chemosphere. Vol. 139, pp: 181-189.
30
Stevenson, L.M.; Dickson, H.; Klanjscek, T.; Keller, A.A.; McCauley, E. and Nisbet, R.M., 2013.Environmental feedbacks and engineered nanoparticles: mitigation of silver nanoparticle toxicity to Chlamydomonas reinhardtii by algal produced organic compounds. PLoS One. Vol. 8, No. 9,
31
pp: 744-756.
32
Thomas, S. and Egée, S., 1998. Fish red blood cells: characteristics and physiological role of the membrane ion transporters. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology. Vol. 119, pp: 79-86.
33
Vignesh,V.;Anbarasi,K.F.;Karthikeyeni,S.; Sathiyanarayanan, G.; Subramanian, P. and Thirumurugan, R., 2013. A superficial phyto-assisted synthesis of silver nanoparticles and their assessment on hematological and biochemical parameters in Labeo rohita (Hamilton, 1822). Colloids and Surfaces A: Physicochemical and Engineering Aspects. Vol. 439, pp: 184-192.
34
Völker, C.; Kämpken, I.; Boedicker, C.; Oehlmann, J. and Oetken, M., 2015. Toxicity of silver nanoparticles and ionic silver: comparison of adverse effects and potential toxicity mechanisms in the freshwater clam Sphaerium corneum. Nanotoxicology. Vol. 9, No. 6, pp: 677-685.
35
Völker, C.; Gräf, T.; Schneider, I.; Oetken, M. and Oehlmann, J., 2014. Combined effects of silver nanoparticles and 17α-ethinylestradiol on the freshwater mudsnail Potamopyrgus antipodarum. Environmental Science and Pollution Research. Vol. 21, pp: 10661-10670.
36
Williams, D.; Amman, M.; Autrup, H.; Bridges, J.; Cassee, F.; Donaldson, K.; Fattal, E.; Janssen, C.; De Jong, W.; Jung, T.; Marty, J-P. and Rydzynski K., 2005. The appropriateness of existing methodologies to assess the potential risks associated with engineered and adventitious products of nanotechnologies. In: risks Scoeanih, editor: European commission health and consumer protection directorate general. pp: 1-78.
37
Woodrow Wilson Database. 2014. Nanotechnology consumer product inventory. http://www.nanotechproject. org/cpi/about/analysis/ accessed at 10/14/2014.
38
Wu, Y.; Zhou, Q.; Li, H.; Liu, W.; Wang, T. and Jiang, G., 2010. Effects of silver nanoparticles on the development and histopathology biomarkers of Japanese medaka (Oryzias latipes) using the partial-life test. Aquatic Toxicology. Vol. 100, pp: 160-167.
39
Xing, H.; Li, S.; Wang, X.; Gao, X.; Xu, S. and Wang, X., 2013. Effects of atrazine and chlorpyrifos on the mRNA levels of HSP70 and HSC70 in the liver, brain, kidney and gill of common carp. Chemosphere. Vol. 90, pp: 910-916.
40
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر نانوذرات نقره بر ترکیب لاشه ماهی قرمز (Carassius auratus) تغذیه شده با الیگوساکارید رافینوز و باکتری Pediococcus acidilactici
هدف از تحقیق حاضر بررسی تاثیر حفاظتی پیش تیمار باکتری Pediococcus acidilactic و الیگوساکارید رافینوز بر ترکیب لاشه در ماهی قرمز (carassius auratus) در مواجهه با نانو نقره بود. بر این اساس تعداد 250 عدد ماهی قرمز با میانگین وزنی 0/18±26/3 در چهار تیمار و هر تیمار با سه تکرار شامل: غذای بدون مکمل غذایی (تیمار1شاهد)، غذای حاوی پروبیوتیک باکتری با غلظت 107 کلنی بر گرم غذا (تیمار2)، غذای حاوی رافینوز به میزان 1 گرم در کیلوگرم غذا (تیمار3) و غذای سین بیوتیک (تیمار 4) تقسیم شد و به مدت 6 هفته تغذیه شدند. بعد از پایان دوره تغذیه، به تیمارهای آزمایش میزان 50 درصد غلظت کشنده نانو نقره (0/5 میلی گرم بر لیتر) به مدت 14 روز اضافه شد و در پایان دوره 14 روزه، نمونه برداری از لاشه صورت گرفت. تجزیه و تحلیل داده ها در پایان دوره آزمایش نشان داد شاخص های رطوبت، خاکستر، پروتئین و چربی لاشه در بین تیمارهای آزمایش اختلاف معنی داری با هم نداشتند (0/05<P). هرچند در برخی از شاخص ها ازجمله رطوبت، پروتئین و خاکستر در تیمار سین بیوتیک روند افزایشی را نشان داد ولی این افزایش معنی دار نبود (0/05<P). با توجه به نتایج به دست آمده از این پژوهش و عدم معنی داری شاخص های مربوطه در تیمارهای مذکور به نظر می رسد استفاده از این مکمل ها با این غلظت اثرگذاری مناسب را بر شاخص های مربوطه ندارد.
http://www.aejournal.ir/article_91956_850aad40f2efae1ceb8626ebab4cbf71.pdf
2019-04-21
247
252
پروبیوتیک
پربیوتیک
نانو نقره
خون شناسی
ماهی کاراس طلایی
فاطمه زهرا
جعفری
jafarizahra293@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
سید علی اکبر
هدایتی
hedayati@gau.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سیدحسین
حسینی فر
hossein.hoseinifar@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
علی
جافرنوده
a.jafar55@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
طاهره
باقری
bagheri1360@gmail.com
5
مرکز تحقیقات آب های دور، موسسه تحقیقات شیلات ایران، سازمان تحقیقات، ترویج و آموزش کشاورزی، چابهار، ایران
AUTHOR
Alishahi, M. And Heidari, B., 2011. Investigation of the toxicity of silver nanoparticles in Naples, Artemia, Lake Urmia. Journal of Modern Veterinary Research. Vol. 9, pp: 39-50.
1
Anderson, J.; Jackson, A.J.; Matty, A.J. and Capper, B.S., 1984. Effect of dietary carbohydrate and fiber on the tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture. Vol. 37, pp: 303-314.
2
Arockiaraj, A.J.; Haniffa, M.A.; Seetharaman, S. and Appelbaum, S., 2008. Utilization of various dietary carbohydrate levels by the freshwater catfish (Mystus montanus) (Jerdon). Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 8, pp: 31-35.
3
Ashouri, S.; Keyvanshokooh, S.; Salati, A.P.; Johari, S.A. and Pasha-Zanoosi, H., 2015. Effects of different levels of dietary selenium nanoparticles on growth performance, muscle composition, blood biochemical profiles and antioxidant status of common carp (Cyprinus carpio). Aquaculture. Vol. 446, pp: 25-29.
4
Asghari, S.; Johari, S.A.; Lee, J.H.; Kim, Y.S.; Jeon, Y.B.; Choi, H.J.; Moon, M.C.; Yu, I.J., 2012. Toxicity of various silver nanoparticles compared to silver ions in Daphnia magna. Journal of Nanobiotechnology. Vol. 10. pp: 28-39.
5
AOAC. 1990. Official Methods of Analysis, fifteenth. Association of Official Analytical Chemists, Arlington VA, USA.
6
Blaise, C.; Gagne, F.; Ferard, J.F.; Eullaffroy, P., 2008. Ecotoxicity of selected nano‐ materials to aquatic organisms. Environmental toxicology. Vol. 23, pp: 591-598.
7
Baroiller, J.F. and Guiguen, Y.A., 1999. Endocrine and environmental aspects of sex differentiation in fish. CMLS, Cell and Molecular Life Science. Vol. 55, pp: 910-931.
8
Gong, P.; Li, H.; He, X.; Wang, K.; Hu, J.; Tan, W. and Yang, X., 2007. Preparation and antibacterial activity of Fe3O Ag nanoparticles. Nanotechnology. Vol. 18, pp: 28-56.
9
Genc, M.A.; Yilmaz, E.; Genc, E. and Aktas, M., 2007. Effects of dietary mannan oligosaccharide (MOS) on growth, body composition and intestine and liver histology of the hybrid Tilapia (Oreochromis niloticus*O. aureus). Israeil J. Aquacual. Vol. 59, pp: 10-16.
10
Hilton, J.W. and Atkinson, J.L., 1982. Response of rainbow trout (Salmo gairdneri) to increased levels of available carbohydrate in practical trout diets. British Journal of Nutrition. Vol. 47, pp:597-607.
11
Khan, S.H. and Ansari, F.A., 2007. Probiotics the friendly bacteria with market potential in global market. Pakistan Journal of Pharmaceu tical Scinces. Vol.20, pp: 71-76.
12
Mingchun, R.; Qinghui, A.; Kangsen, M.; Hongming, M. and Xiaojie, W., 2011. Effect of dietary carbohydrate level on growthperformance, body composition, apparent digestibility coefficient and digestive enzyme activities of juvenile cobia, (Rachycentron canadum) L. Aquaculture Research.Vol. 42, pp: 1467-1475.
13
Rigos, G.; Samartzis, A.; Henry, M.; Fountoulaki, E.; Cotou, E.; Sweetman, J.; Davies, S. and Nengas, I., 2010. Effects of additive iron on growth, tissue distribution, haematology and immunology of gilthead sea bream, Sparus aurata. Aquaculture International. Vol. 16, pp: 1093-1104.
14
Salami khorshidi, N.; keyvan shokuh, S.; salaty, A.; Zakeri, M.; Mahmudi, N.; Tahmasebi, D. and Kahyani, A., 2011. Effect of different levels of dietary nucleotides on body composition in fingerling rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Oceanography. Vol. 9, pp: 6-41.
15
Shiau S.Y.; 1997. Utilization of carbohydrates in warm water fish-with particular reference to tilapia, (Oreochromis niloticus × O. aureus). Aquaculture. Vol. 151, pp:79
16
Tukmechi, A.; Rahmati Andani, H.R.; Manaffar, R. and Sheikhzadeh, N., 2011. Dietary administration of mercapto ethanol treated Saccharomyces cerevisiae enhanced the growth, innate immune. response and disease resistance of the rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 30, pp: 923-928.
17
Tahmasebi, D., 2014. Evaluation of Nutrition with Vitamin E (alpha tocopherol acetate and Selenium Nanoparticles on growth, survival, carcass composition and glutathione peroxidase enzyme and total body malondialdehyde in whitefish (Rutilus frisii kutum). Master's thesis of Gorgan University of Agricultural Sciences and Natural Resources. 56 p.
18
Van Loo, J.; Cummings, J.; Delzenne, N.; Franck, A.; Hopkins, M.; MacFarlane, G.; Newton, D.; Quigely, M.; Roberfroid, M.; Van Vliet, T. and Van den, H.E., 1999. Functional food properties of non-digestible oligosaccharide: a consensus report from the ENDO project (DGXII AIRII CT94-1095). British Journal of Natural Resources. Vol. 8, pp: 121-132.
19
Zhou, X.; Wang, Y.; Gu, Q. and Li, W., 2009. Effects of different dietary selenium sources (selenium nanoparticle and selenomethionine) on growth performance, muscle composition and glutathione peroxidase enzyme activity of crucian carp (Carassiu auratus gibelio). Aquaculture. Vol. 291, pp: 78-81.
20
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین زمان اولین تقسیم میتوزی در قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) و ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspius)
متوسط زمان لازم بین لقاح تا اولین تقسیم میتوزی (FCI) First Cleavage Interval در قزلآلای رنگینکمان Oncorhynchus mykiss و ماهی آزاد دریای خزر Salmo trutta caspius تعیین شد. لقاح با استفاده از تخمک و اسپرم استحصالی از 6 الی 9 قطعه مولد ماده از هر گونه انجام شد. بهمنظور حذف اثرات انفرادی مولدین بر زمان احتمالی تقسیم سلولی، اسپرم و تخمک متعلق به افراد مختلف یک گونه، پیش از لقاح با یکدیگر مخلوط شدند. لقاح بهروش خشک انجام و تخمهای لقاح یافته در 0/3± 7/3 درجه سانتیگراد انکوبه شدند. نمونهبرداری از تخمهای لقاح یافته هر گونه در فاصله زمانی 5 الی 12 ساعت پس از لقاح با فاصله زمانی 10 دقیقه انجام شد. در هر مرحله، حداقل 30 عدد تخم نمونهبرداری شده و بلافاصله پس از شفافسازی، در محلول داویدسون تثبیت شدند. نمونهها با بزرگنمایی 40X جهت حضور شیار تقسیم و وقوع تقسیم میتوزی بررسی شدند. معیار وقوع اولین تقسیم میتوزی، وجود شیار تقسیم کامل در حداقل 50 درصد نمونهها بود. نتایج نشان داد که اولین تقسیم سلولی تخم در قزلآلای رنگینکمان بهطور میانگین در 30±3212 درجه-دقیقه پس از لقاح (حدود 7 ساعت و بیست دقیقه) بهطور معنیداری در زمان کوتاهتری نسبت به ماهی آزاد دریای خزر 35±4015 درجه-دقیقه (9 ساعت و ده دقیقه) رخ میدهد و لذا زمان مناسب برای القای تتراپلوییدی در ماهی آزاد دریای خزر و قزلآلای رنگینکمان با یکدیگر کاملاً متفاوت خواهد بود. ارزیابی اثرات انفرادی والدین بر زمان اولین تقسیم سلولی تخم در مطالعات آتی پیشنهاد میشود.
http://www.aejournal.ir/article_89847_72303a1a8b0f278ae278478ed4f97ed4.pdf
2019-04-21
253
256
قزلآلای رنگینکمان
ماهی آزاد دریای خزر
تقسیم میتوز
ثارالله
زارعی
sarallah.zarei@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران، صندوق پستی: 83111-84156
AUTHOR
سالار
درافشان
sdorafshan@cc.iut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران، صندوق پستی: 83111-84156
LEAD_AUTHOR
فاطمه
پیکان حیرتی
fheyrati@cc.iut.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران، صندوق پستی: 83111-84156
AUTHOR
پاشازانوسی، ع.؛ درافشان، س. و ابراهیمزاده، س.م.، 1392. ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspius). انتشارات آموخته، اصفهان، ایران. 172 صفحه.
1
درافشان،س.، 1385. دستکاریهای کروموزومی ماهی آزاد دریای خزر (Salmo truttacaspius) و قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss) و مقایسه رشد در نسل F1. رساله دکتری شیلات، دانشکده منابع طبیعی علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس. 140 صفحه.
2
درافشان، س.؛ وفاییسعدی، ا. و نکوئیفر، ع.، 1393. بهترین شرایط شوک حرارتی برای القای تتراپلوییدی در قزلآلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 69، شماره 4، صفحات 411 تا 421.
3
کلباسی، م.ر.؛ باقری، ع.؛ پورکاظمی، م. و عبدالحی، ح.، 1382. بررسی ایجاد ماهیان تتراپلویید قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss) بهوسیله شوک گرمایی. مجله علمی شیلات ایران. دوره 12، شماره 4، صفحات 143 تا 152.
4
نفیسیبهابادی، م. و فلاحتیمروست، ع.، 1386. راهنمای عملی تکثیر و پرورش ماهی قزلآلای رنگینکمان. دانشگاه هرمزگان، بندرعباس. 288صفحه.
5
Chourrout, D., 1988. Induction of gynogenesis, triploidy and tetraploidy in fish. Animal Plant Science. Vol. 1, pp: 65-70.
6
Dunhum, R.A., 2004. Aquaculture fisheries biotechnology: genetic approaches. CABI Publishing, Massachusetts. 372 p.
7
Hershberger, W.K. and Hostuttler, M.A., 2005. Variation in time first cleavage in rainbow trout Oncorhynchus mykiss embryos a major factor in induction of tetraploids. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 36, pp: 96-102.
8
Legatt, R.A.; Scheer, K.W.; Afonso, L.O.B. and Iwama, G.K., 2006. Triploid and diploid rainbow trout do not differ in their stress response to transportation. North American Journal of Fisheries Management. Vol. 68, pp: 1-8.
9
Myers, J.; Iwamoto, R.N. and Hershberger, W.K., l987. The introduction of tetraploidy in salmonids. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 17, pp: 1-17.
10
Palti, Y.; Li, J.J. and Thorgaard, G.H., 1997. Improved efficiency of heat and pressure shocks for producing gynogenetic rainbow trout. The Progressive Fish Culturist. Vol. 59, pp: 1-13.
11
Pandian, T.J. and Koteeswaran, R., 1998. Ploidy induction and sex control in fish. Hydrobiologia, Vol. 384, pp: 167-243.
12
Thorgaard, G.H.; Jazwin, M.E. and Stir, A.R., 198l. Polyploidy induced by heat shock in Rainbow trout: high interference over long map distance. Genetics. Vol. 103, pp: 771-783.
13
Weber, G.M. and Hostuttler, M.A., 2012. Factors affecting the first cleavage interval and effects of parental generation on tetraploid production in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 344, pp: 231-238.
14
ORIGINAL_ARTICLE
مکانیابی استقرار قفسهای دریایی برای ماهی هامور معمولی (Epinephelus coioides) در آبهای پیرامونی جنوب جزیره قشم براساس مدل تحلیل مدیریتی (SWOT) و GIS
هدف پژوهش حاضر شناسایی مناطق مناسب جهت توسعهی آبزیپروری و تعیین مکانهای مناسب جهت استقرار قفسهای دریاییگونه هامور معمولی (Epinephelus coiodes) در محدوده آبهای پیرامون جزیره قشم، با نگرشی بر ملاحظات زیست محیطی و رویکرد توسعه آبزیپروری میباشد. در این راستا، تعیین شرایط بومشناختی منطقه مورد مطالعه برای معرفی هامور معمولی جهت آبزیپروری در قفسهای دریایی، تعیین مناطق مناسب جهت استقرار قفسهای دریایی از طریق مطالعات هیدروبیولوژی،هیدروگرافی، ژئومورفولوژی، بهکارگیری سامانه اطلاعات جغرافیایی (GIS) بهعنوان مدل کاربردی در تعیین مکانهای مناسب جهت استقرار قفسهای دریایی و تعیین اولویت و امتیازبندی مناطق منتخب براساس مدل تحلیل مدیریتی (SWOT) انجام گرفت. دوره بررسی 16 ماهه این پژوهش از مهرماه 1395 لغایت دیماه 1396 ادامه یافت و منطقه موردمطالعه در محدوده استان هرمزگان، آبهای پیرامونی جزیره قشم بود. براساس مجموعه مطالعات انجام شده در رابطه با ویژگیهای ژئومورفولوژی ناحیه ساحلی و هیدروگرافی منطقه مورد مطالعه مشخص شد که ناحیه ساحلی جنوبی جزیره قشم در بخش غربی و همچنین محدوده دریایی جزیره هنگام مکانهای مناسب و دارای امنیت محیطی میباشند که اقدامات انجام شده در رابطه با استقرار سیستمهای قفس با توجه به مدیریت علمی، موفقیتآمیز بود. با توجه به بالا بودن ضریب اطمینان حاصل از ارزیابی منطقه از طریق مدل ارائه شده PASTAKIA و روش ماتریس ترکیبی، این مناطق دارای معیارهای با امتیاز بالا بود. این معیار و امتیاز در گروه متوسط توصیف اثر و معیار کمی 25 تا 50 بوده که بهلحاظتصمیمگیری و اقدام، نیازمند رعایت اصول مدیریتی میباشد.
http://www.aejournal.ir/article_88518_dc80a8d083de91f4b6b0fa0e2d1a506d.pdf
2019-04-21
257
264
مکانیابی
قفسهای دریایی
هامور معمولی
سامانه اطلاعات جغرافیایی (GIS)
جزیره قشم
مریم
نوری بالانجی
maryamnoory2003@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
ایمان
سوری نژاد
i_sourinezhad@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
فریدون
عوفی
sillaginid@hotmail.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
زهرا
قاسمی
zghasemi446@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
بوریج، م.، 1393. کتاب پرورش آبزیان در قفس. ترجمه یزدانی جهرمی، ع.ح.، ویرایشسوم. صفحات 55 تا 57.
1
پژوهشکدهآبزیپروری جنوبکشور. 1383. بررسی امکان پرورش ماهی هامور در قفسهای شناور. پژوهشکده آبزیپروری جنوب کشور، خوزستان- اهواز. صفحات 42 تا 50.
2
عوفی، ف.، 1392. گزارش تحلیلی انتخاب مکان مناسب جهت استقرار سیستمهای پرورش ماهی در قفس درخلیجفارس. مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتیکشور. تهران، صفحات 1 تا 38.
3
عوفی، ف.، 1393. بهکارگیری سیستم (GIS) جهت جانمایی و انتخاب مکان مناسب استقرار قفسهای پرورش ماهی. مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتیکشور. تهران. صفحات 13 تا 46.
4
FAO. 2015. Cage aquaculture: Regional reviews and global overview. FAO Fisheries and Aquaculture Department, Rome.
5
Pastakia, C., 1998. The Rapid Impact Assessment Matrix (RIAM)-A New Tool for Environmental Impact Assessment, Environmental Impact Assessment using the Rapid Impact Assessment Matrix (RIAM), ed. Kurt Jensen. Olsen and Olsen, Fredensborg, Denmark.
6
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تغییرات کیفی گوشت چرخ کرده ماهی کپور نقره ای (Hpophthalmichthys molitrix) در دمای فوق سرما (Superchilling) در بسته بندی اتمسفر اصلاح شده و معمولی
در این تحقیق تغییرات کیفی گوشت چرخ کرده ماهی در بستهبندی اتمسفر اصلاح شده(به نسبت 50:5:45 برای گازهای N2:O2:CO2)و معمولی نگه داری شده در دمای فوق سرما (2– درجه سانتی گراد)مورد بررسی قرار گرفت.نتایج نشان داد که روند تغییرات ازت آزاد (TVB-N میلی گرم / 100 گرم نمونه) با استفاده از روش فوق سرما در بسته بندی اتمسفر اصلاح شده موجب کندتر شدن تشکیل مواد ازته فرار گردید و افزایش این شاخص در بسته بندی معمولی در طول بررسی معنی دار بوده است (0/05>P). مقدار مواد واکنش گر با تیوباربیوتیک اسید (TBARSبرحسب میلی گرم مالوندی آلدهید/کیلوگرم نمونه) در بسته بندی معمولی پس از 35 روز ازحد مجاز گذشت و به 0/05 ± 2/27 میلی گرم رسید. در حالی که بسته بندی اتمسفر اصلاح شده به صورت معنی داری کم تر بود(0/05>P). تغییرات pH در هر دو تیمار در طول زمان یکسان و نزولی بود. به طور کلی افزایشمعنی داری در میزان TBARS وTVB-N در نمونه های بسته بندی معمولی نسبت به بسته بندی اتمسفر اصلاح شده مشاهده شد که این امر بیانگر اکسایش چربی در خلال نگه داری در بسته بندی معمولی به دلیل نفوذ اکسیژن به درون بسته بوده و حاکی از فعالیت مکانیسم اکسایشی و آنزیمی در هنگام نگه داری می باشد. در ارزیابی های حسی، تیمار بسته بندی اتمسفر اصلاح شده به طور معنی داری امتیاز کیفی کل بالاتری از نظر فاکتورهای رنگ، بو و بافت کسب نمود (0/05>P). این نتیجه را می توان ناشی از تاثیر بیش تر اتمسفر اصلاح شده بر روند تاخیر و یا توقف فعالیت های بیوشیمیایی نسبت دانست. در مجموع، بسته بندی اتمسفر اصلاح شده در دمای فوق سرما به عنوان تیمار منتخب بوده و زمان نگاه داری را به مدت 5 روز افزایش داد.
http://www.aejournal.ir/article_89945_fa499f1c918a77f026ed8a5948a38809.pdf
2019-04-21
265
272
کپور نقره ای
فوق سرما
اتمسفر اصلاح شده
زمان ماندگاری
فهیمه
غسالی کاربندی
fahimeh.ghasali@yahoo.com
1
گروه شیلات، واحدتالش، دانشگاه آزاداسلامی، تالش، ایران، صندوق پستی: 65143-43711
AUTHOR
سیدجواد
ابوالقاسمی
abolghasemisj@yahoo.com
2
گروه شیلات، واحد تالش، دانشگاه آزاد اسلامی، تالش، ایران، صندوق پستی: 65143-43711
LEAD_AUTHOR
امیر رضا
شویکلو
shaviklo@gmail.com
3
موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، موسسه تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
AUTHOR
استاندارد ملی ایران شماره 10494. 1383. گوشت و فرآورده های آن، اندازه گیری میزان اسیدتیوباربیوتیک. موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران. 18 صفحه.
1
استاندارد ملی ایران شماره 1028. 1383. گوشت و فرآورده های آن، اندازه گیری میزان مواد ازته فرار. موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران. 24 صفحه.
2
پروانه، و.، 1386. کنترل کیفی و آزمایشهای شیمیایی مواد غذایی. مؤسسة انتشارات و چاپ دانشگاه تهران. چاپ چهارم. 354 صفحه.
3
جلیلی، س.ح.، 1388. استفاده از قسمت های خاص ماهی کپور نقره ای (Hypophthalmichtys molitrix) برای تولید فیله. گزارش نهایی طرح تحقیقاتی. مرکز ملی تحقیقات فرآوری آبزیان، موسسه تحقیقات شیلات ایران. 72 صفحه.
4
سلمانی جلودار، ع.، 1388. استفاده از تکنیک بسته بندی اتمسفر اصلاح شده در بهبود زمان ماندگاری ماهی قزل آلای تازه. گزارش نهایی طرح های تحقیقاتی. مرکز ملی تحقیقات فرآوری آبزیان. شماره ثبت 1633/87، 79 صفحه.
5
شویکلو،ا.،1383. فرآوردههای با ارزش افزوده شیلاتی. سازمان شیلات ایران، معاونت صید و صنایع شیلاتی. 64 صفحه.
6
شویکلو، ا.، 1385. ارزشیابی حسی قدرت ژلی سوریمی تولیدی از ماهی های داخلی. سازمان شیلات ایران، معاونت صید و صنایع شیلاتی. 85 صفحه.
7
Ante, J., 1995. Dietetic aspect research of the production of semi-finished food made of fish meat. svibor - Collecting Data on Projects in Croatia. Fisheries science. Vol. 71, pp: 648-654.
8
Auburg, S.P., 1993. Review: interaction of malondialdehyde with biological molecules, new trends about reactivity and significance. Int. J. Food Sci. Technol. Vol. 28, pp: 323-335.
9
Bao, D. and Huynh, N., 2007. Effects of Dry Ice and Superchilling on Quality and Shelf Life of Arctic Charr (Salvelinus alpinus) Fillets. International Journal of Food Engineering. Vol. 3, pp: 14.
10
Bernardi, F.M.A.; Matos, T.G.S. and Barreto, A.S.F.H., 2009. effect of shelf life period in modified atmosphere package and of processing technology on microflora of Portuguese smoked dry sausages. Revista Portuguesa de zootecnia. Vol. 2, pp: 15-35.
11
Cakli, S.; Kilinc, B.; Dincer, T. and Tolasa, S., 2006. Comparison of the shelf lifes of MAP and Vacuum packaged hot smoked rainbow trout (Onchoryncus mykiss). Euroup Food Research Technology. Vol. 224, pp: 19-26.
12
Chytiri, S.; Chouliara, I.; Savvaidis, I.N. and Kontominas, M.G., 2004. Microbiological, Chemical and Sensory assessment of iced whole and filleted aquacultured rainbow trout. Food Microbiology. Vol. 21, PP: 157-165.
13
Connell, J.J., 1990. Control of Fish Quality. 3rd ed, London, Fishing News Book. 226 p.
14
Duun, J.K., 2008. Grains and Oilseeds. Canadian International Grains Institute. Vol. 2, pp: 853-860.
15
Duun, S. and Rustad, T., 2008. Quality of superchilled vacuum packed Atlantic salmon (Salmo salar) fillets stored at 1.4 and 3.6 0C. Food Chemistry. Vol. 106, pp: 122-131.
16
Erikson, U.; Misimi, E.L. and Gallart, J., 2011. Superchilling of rested Atlantic salmon, Different chilling strategies and effectson fish and fillet quality. Food Chemistry. Vol. 127, pp: 1427-1437.
17
Fan, W.; Chi, Y. and Zhang, S., 2008. The use of a tea polyphenol dips to extend the shelf life of silver carp (Hypophthalmicthys molitrix) during storage in ice. Food Chemistry. Vol. 108, pp: 148-153.
18
Fernández, K.; Aspe, E. and Roeckel, M., 2009. Shelf life extension on fillets of Atlantic Salmon (Salmo salar) using natural additives, superchilling and modified atmosphere packaging. Food Control. Vol. 20, pp: 1036-1042.
19
FAO. Food and Agriculture Organization of the United Nations. 1997. Report on the national workshop on fish technology and quality assurance. Bandar Abbass, Iran. PP:59-70.
20
Graciela, B. and Isabel, E., 2003. Influence of storage conditions on some physical and chemicalproperties of smoked salmon (Salmo salar) processed by vacuum impregnation techniques. Food Chemistry. Vol. 81, pp: 85-90.
21
Huss, H., 1994. Assurance of seafood quality. FAO Fisheries Technical Paper. 334 p.
22
Huynh, N. and Bao, D., 2007. Effects of Dry Ice and Superchilling onQuality and Shelf Life of Arctic Charr (Salvelinus alpinus) Fillets. International Journal of Food Engineering. Vol. 3, pp:14.
23
Ismail Yuksel, G.; Eduardo Esteves, B.; Jaime Anibal, C. and Abdullah, D., 2013. Effects of chilled storage on quality of vacuum packed meagre fillets. Journal of Food Engineering. Vol. 115, pp: 486-494.
24
Juan, C.and Ramirez-Suarez, M., 2006. Effect of high pressure processing (HPP) on shelf life of albacore tuna (Thunnus alalunga) minced muscle. Innovative Food Science and Emerging Technologies. Vol. 7, pp: 19-27.
25
Kose, S. and Boran, M., 2006. Storage properties of refrigerated whiting mince after mincing by three different methods. Food Chemistry. Vol. 99, pp: 129-135.
26
Lannelongue, M.; Hanna, M.O.; Finne, G.; Nickelsen, R. and Vanderzant, C., 1982. Storage characteristics of finfish fillets (Archosargus probatocephalus) packaged in modified gas atmospheres containing carbon dioxide. Journal of Food Protection. Vol. 45, pp:440-444.
27
Leroi, F.; Joffraud, J.J.; Chevalier, F. and Cardinal, M., 2001. Research of quality indices for cold-smoked salmon using stepwise multiple regressions of microbiological counts and physico-chemical parameters. Journal of Applied Microbiology. Vol. 90, pp:578-587.
28
Lindsay, R.C., 1991. Flavour of fish. Paper presented at 8th World Congress of Food Science and Technology, Toronto, Canada.
29
Magnea, G.S., 2008. Combined Blast and Contact cooling. Effects on physiochemical characteristics of fresh haddock (Melanogrammus aeglefinus) fillets. Food Research, Innovation & Safety. ISSN 1670-7192. pp: 39.
30
Marta Dondero, A.; Fabiola Cisternas, A.; Laura Carvajal, A. and Ricardo S., 2004. Changes in quality of vacuum-packed cold-smoked salmon (Salmo salar) as a function of storage temperature. Food Chemistry. Vol. 87, pp: 543-550.
31
Masniyom, P., 2011. Deterioration and shelf-life extension of fish and fishery products by modified atmosphere packaging. Songklanakarin Jour. Sci. Technol. Vol. 32, pp:181-192.
32
Matos, T.G.S.; Barreto, A.S.F.H. and Bernardo, F.M.A., 2005. effect of shelf life period in modified atmosphere package and of processing technology on microflora of Portuguese smoked dry sausages. Revista Portuguesa de zootecnia. Vol. 2, pp: 15-35.
33
Olafsdottir, G.; Lauzon. H. and Martin. D., 2006. Evaluation of Shelf Life of Superchilled Cod (Gadus morhua) Fillets and the Influence of Temperature Fluctuations During Storage on Microbial and Chemical Quality Indicators. Journal of food science. Vol. 71, pp: 14.
34
Qian, L. and Baohua, K., 2014. Effects of superchilling and cryoprotectants on the quality of common carp (Cyprinus carpio) surimi: Microbial growth, oxidation, and physiochemical properties. Food Science and Technology. Vol. 57, pp: 165-171.
35
Sabrina Macé, A.B.C. and Jean Jacques, J., 2013. Evaluation of the spoilage potential of bacteria isolated from spoiled raw salmon (Salmo salar) fillets stored under modified atmosphere packaging. International Journal of Food Microbiology. Vol. 160, pp: 227-238.
36
Silva, L.V.A.; Prinyawiwatkul, W.; King, J.M.; Kyoon No, H.; Bankston, J.D. and Ge, B., 2008. Effect of preservatives on microbial safety and quality of smoked blue catfish (Ictalurus furcatus) steaks during room-temperature storage. Food Microbiology. Vol.25, pp: 958-963.
37
Tang, S.; Kerry, J.P.; Sheehan, D.; Buckley, D.J. and Morrissey, P.A., 2001. Antioxidative effect of added tea catechins on susceptibility of cooked red meat, poultry and fish patties to lipid oxidation. Food Research International. Vol. 34, PP: 651-657.
38
Watts, B.M.; Ylimaki, G.L.; Jeffery, L.E. and Elias, L.G., 1989. Basic sensory methods for food evaluation. Int, Res. Cen. Canada. 136 p.
39
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات مولتی آنزیم کمبو در جیره غذایی بر شاخص های رشد، بازماندگی و عملکرد تولیدمثلی ماهی قرمز (Carassius auratus gibelio)
ماهی قرمز (Carassius auratus gibelio) به طور وسیعی به عنوان معروفترین ماهی در سرتاسر جهان گسترش یافته است و یک مدل زیستی مناسب به شمار میرود. آنزیمها میتوانند اثرات عوامل ضدتغذیهای را از بین ببرند و سبب بهبود عملکرد رشد ماهی شوند. جیره غذایی به خاطر اثری که روی کیفیت تخم دارد مورد توجه زیادی قرارگرفته است، یافتههای جدید نشان میدهد که افزودن مولتیآنزیمها به جیره غذایی میتواند بر شاخصهای گنادی تأثیرگذار باشد. هدف از این پژوهش به کارگیری مولتی آنزیم کمبو در جیره غذایی ماهی قرمز و بررسی اثربخشی آن بر شاخص های رشد، بازماندگی و عملکرد تولیدمثلی است. برای انجام این آزمایش از جیره تجاری (انرژی 4EF3001، تایلند) استفاده شد و مولتی آنزیم کمبو® (شرکت زوبین زرین، ایران) در 5 تیمار 0، 250، 500، 750 و 1000 میلی گرم بر کیلوگرم غذا، به جیره غذایی اضافه شد. این مولتی آنزیم به طورکلی در مقادیر 750 و 1000 میلیگرم بر کیلوگرم جیره غذایی بهترین فاکتور رشد را ایجاد کرد که با گروه شاهد تفاوت معنی دار داشت (0/05>P) اما در درصد بازماندگی تفاوت معنی داری بین گروه های آزمایش ایجاد نکرد (0/05<P). هم چنین مولتی آنزیم کمبو با مقدار 1000 میلیگرم بر کیلوگرم جیره غذایی بالاترین میزان شاخص گنادوسوماتیک، هم آوری و درصد لقاح را ایجاد کرد که با گروه شاهد دارای تفاوت معنی دار بود (0/05>P) اما در هیچ یک از گروه های آزمایش در قابلیت تفریخ، بازماندگی لاروی و درصد تحرک اسپرم تفاوت معنی دار ایجاد نگردید (0/05<P). در یک نتیجه گیری کلی مولتی آنزیم کمبو با مقدار750 میلیگرم برکیلوگرم جیره غذایی به عنوان بهترین میزان آنزیم جهت پرورش و میزان 1000 میلیگرم بر کیلوگرم جیره غذایی به عنوان بهترین سطح برای بهبود عملکرد تولیدمثلی معرفی می گردد.
http://www.aejournal.ir/article_92004_61c99524da2f850767845fadc98fa5b7.pdf
2019-04-21
273
282
شاخص های رشد
عملکرد تولیدمثلی
مولتی آنزیم کمبو
ماهی قرمز (Carassius auratus gibelio)
مهرداد
عادلیان
mehrdad20ad@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
ایمانپور
mrimanpoor@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
ولی اله
جعفری
vjafari110@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
ایمانپور، م.ر. و زادمجید، و.، 1388. مقدمه ای بر تکثیر ماهیان. انتشارات دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 190 صفحه.
1
تبریزی، م.؛ نجاتی، م.؛ نوتاش، ش. و میرزایی، ح.، 1390. تأثیر سطوح مختلف مولتیآنزیم بر عملکرد و میزان بقاء ماهیان قزلآلای رنگینکمان پرواری (Oncorhynchusmykiss). مجله دامپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی واحد تبریز. دوره 5، شماره 1، صفحات 1103 تا 1110.
2
عادلیان، م.؛ ایمانپور، م.؛ تقی زاده، و. ومازندرانی، م.، 1392. استفاده از مولتیآنزیم ناتوزیم در جیره غذایی ماهی کپور معمولی (Cyprinuscarpio) و تأثیرآن بر شاخص گنادوسوماتیک.دومین همایش ملی شیلات و آبزیان ایران. دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس.
3
عادلیان، م.؛ ایمانپور، م.؛ تقی زاده، و. ومازندرانی، م.، 1395. استفاده از مولتی آنزیم کمین در جیره غذایی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) و اثرات آن بر شاخص های رشد و برخی از فاکتورهای بیوشیمیایی خون.فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 8، شماره 1، صفحات 201 تا 206.
4
عادلیان، م.؛ ایمانپور، م.؛ تقی زاده، و. ومازندرانی، م.، 1395.استفاده از مولتی آنزیم ناتوزیم در جیره غذایی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) و اثرات آن بر شاخص های رشد و برخی از فاکتورهای بیوشیمیایی خون.فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 8، شماره 2، صفحات 207 تا 214.
5
قبادی، ش.؛ متین فر، ع.؛ نظامی، ش. و سلطانی، م.، 1388. عملکرد مکمل آنزیمی آویزایم بر جایگزینی آرد ماهی با آرد سویا و تأثیر آن بر رشد و بازماندگی ماهی قزلآلای رنگینکمان .مجله شیلات ایران. سال 3، شماره 2، صفحات 11 تا 22.
6
نوبخت، ع. واشرف، ع.، 1393. بررسی اثرات سطوح مختلف تفاله چغندرقند و مولتی آنزیم کمبو بر عملکرد، فراسنجه های خون و صفات کیفی تخممرغ و در مرغ های تخم گذار. نشریه علوم دامی. شماره 102، صفحات 42 تا 51.
7
نوبخت، ع.؛ مهینی، ف. و خدایی، ص.، 1391. بررسی اثر استفاده از آنزیم های تجاری بر عملکرد و کیفیت لاشة جوجه های گوشتی تغذیه شده با جیره های بر پایة گندم، و جو. نشریه پژوهش های علوم دامی ایران. جلد 4، شماره 1، صفحات 32 تا 38.
8
Ai, Q.; Kangsen, M.; Wenbing, Zh.; Wei, X.; Beiping, T.; Chunxiao, Zh. and Huitao, L., 2007. Effects of Exogenous Enzymes (Phytase, Non-Starch Polysaccharide Enzyme) in Diets on Growth, Feed Utilization, Nitrogen and Phosphorus Excretion of Japanese Seabass, Lateolabrax japonicus. Comparative biochemistry and physiology Part A: Molecular and integrative physiology. Vol. 147, No. 2, pp: 502-508.
9
Aimin, W. and Liu, W., 2006. Effects of Exogenous Enzymes on the Growth and Apparent Digestivibility of Allogynogenetic Crucian Carp Fingerlings [J]. Feed Industry. Vol. 2, 8 p.
10
Alava, V.R.; Kanazawa, A.; Teshima, S. and Sakamoto, S., 1993. Effect of Dietary Phospholipids and N-3 Highly Unsaturated Fatty Acids on Ovarian Development of Kuruma Prawn. Nippon Suisan Gakkaishi. Nippon Suisan Gakkai. Vol. 59, No. 2, pp: 345-351.
11
Biswas, S.P., 1993. Manual of Methods in Fish Biology. South Asian Publishers.
12
Bjerselius, R.; Hákan, O. and Wenbin, Zh., 1995. Endocrine, Gonadal and Behavioral Responses of Male Crucian Carp to the Hormonal Pheromone 17α, 20β Dihydroxy-4-Pregnen-3-One. Chemical Senses. Oxford University Press. Vol. 20, No. 2, pp: 221-230.
13
Bogut, I.; Opačak, A. and Stević, I., 1995. The Influence of Polyzymes Added to the Food on the Growth of Carp Fingerlings (Cyprinus carpio L.). Aquaculture. Vol. 129, No. 1. pp: 252-261.
14
Boonyaratpalin, M.; Promkunthong, W. and Hunter, B., 2000. Effects of Enzyme Pre-Treatment on in Vitro Glucose Solubility of Asian Plant by-Products and Growth and Digestibility of Oil Palm Expeller Meal by Oreochromis niloticus (Nile Tilapia). In Proceedings of the Third European Symposium on Feed Enzymes, The Netherlands. pp: 86-92.
15
Cahu, C.; Guillaume, J.C.; Stephan,G. and Chim, L., 1994. Influence of Phospholipid and Highly Unsaturated Fatty Acids on Spawning Rate and Egg and Tissue Composition In Penaeus vannamei Fed Semi-Purified Diets. Aquaculture. Vol. 126, No. 1, pp: 159-170.
16
Cahu, C.; Cuzon, L.G. and Quazuguel, P., 1995. Effect of Highly Unsaturated Fatty Acids, α-Tocopherol and Ascorbic Acid in broodstock diet on egg composition and development of Penaeus indicus. Comparative biochemistry & physiology part A: Physiology, Elsevier. Vol. 112, No. 3, pp: 417-424.
17
Castell, J.D. and Klaus, T., 1980. Report of the EIFAC, IUNS and ICES Working Group on Standardization of Methodology in Fish Nutrition research.(Hamburg, Federal Republic of Germany. pp: 21-23.
18
Cavalli, R.O.; Lavens, P. and Sorgeloos, P., 1999. Performance Of Macrobrachium rosenbergii Broodstock Fed Diets with Different Fatty Acid Composition. Aquaculture. Vol. 179, No. 1, pp: 387-402.
19
Cosson, J.; Linhart, O.; Mims, S.D.; Shelton, W.L. and Rodina, M., 2000. Analysis of Motility Parameters from Paddlefish and Shovelnose Sturgeon Spermatozoa. Journal of Fish Biology. Vol. 56, No. 6, pp.: 1348-1367.
20
Farhangi, M. and Chris, G.C., 2007. Effect of Enzyme Supplementation to Dehulled Lupin‐based Diets on Growth, Feed Efficiency, Nutrient Digestibility and Carcass Composition of Rainbow Trout, Oncorhynchus mykiss. Aquaculture Research. Vol. 38, No. 12, pp: 1274-1282.
21
Ghomi, M.R.; Shahriari, R.; Faghani Langroudi, H. and Nikoo, M., 2012. The effects of dietary enzyme on some blood biochemical parameters of the cultured great sturgeon Huso huso juveniles. Comparative clinical pathology. Vol. 21, No. 2. pp: 201-204.
22
Gonzales, J. and John, M., 2012. Preliminary Evaluation on the Effects of Feeds on the Growth and Early Reproductive Performance of Zebrafish (Danio rerio). Journal of the American association for laboratory animal science. Vol. 51, No. 4. 412 p.
23
Hastings, W.H., 1946. Enzyme Supplements to Poultry Feeds. Poultry Science. Vol. 25, No. 6, pp: 584-586.
24
Izquierdo, M.S.; Fernandez-Palacios, H. and Tacon, A.G.J., 2001. Effect of Broodstock Nutrition on Reproductive Performance of Fish. Aquaculture. Vol. 197, No. 1, pp: 25-42.
25
Jaya-Ram, A.; Meng-Kiat, K.; Phaik-Siew, L.; Sagiv, K. and Shu-Chien, A.Ch., 2008. Influence of Dietary HUFA Levels on Reproductive Performance, Tissue Fatty Acid Profile and Desaturase and Elongase mRNAs Expression in Female Zebrafish. Aquaculture. Vol. 277, No. 3, pp: 275-281.
26
Kalantar, M.; Rezaei, M.; Salary, J. and Hemati Matin, H.R., 2014. Thymus vulgaris L., Glycyrrhiza glabra or Combo® Enzyme in Corn vs. Barley-Based Broiler Diets. J of Coastal Life Medicine. Vol. 2, No. 12, pp: 993-997.
27
Kazerani, H.R. and Shahsavani, D., 2011. The Effect of Supplementation of Feed with Exogenous Enzymes on the Growth of Common Carp (Cyprinus carpio). Iranian Journal of Veterinary Research. Vol. 12, No. 2, pp: 127-132.
28
Kumar, S.; Sahu, N.P. and Pal, A.K., 2006. Non Gelatinized Corn Supplemented with Microbial Cc-Amylase at Sub-Optimal Protein in the Diet of Labeo rohita Fingerlings Increases Cell Size of Muscle. Journal of Fisheries andAquatic Science. Vol. 1, No. 2, pp: 102-111.
29
Laird, L.M. and Needham, T., 1988. Growth, Nutrition and Feeding, Salmon and Trout Farming. England: Ellis Horwood Limited.
30
Lin, Sh.; Kangsen, M. and Beiping, T., 2007. Effects of exogenous enzyme supplementation in diets on growth and feed utilization in Tilapia, Oreochromis Niloticus×O. Aureus. Aquaculture research. Vol. 38, No. 15, pp: 1645-1653.
31
Millamena, O.M. and Quinitio, E., 2000. The Effects of Diets on Reproductive Performance of Eyestalk Ablated and Intact Mud Crab Scylla serrata. Aquaculture. Vol. 181, No. 1. pp: 81-90.
32
Moran, E.T. and McGinnis, J., 1968. Growth of Chicks and Turkey Poults Fed Western Barley and Corn Grain-Based Rations: Effect of Autoclaving on Supplemental Enzyme Requirement and Asymmetry of Antibiotic Response between Grains. Poultry Science. Vol. 47, No. 1, pp: 152-158.
33
Pettersson, D. and Åman,P.,1989. Enzyme supplementation of a poultry diet containing rye and wheat. British Journal of Nutrition. Vol. 62, No. 1, pp: 139-149.
34
Ritz, C.W.; Hulet, R.M.; Self, B.B. and Denbow, D.M., 1995. Growth and intestinal morphology of male turkeys as influenced by dietary supplementation of Amylase and Xylanase. Poultry Science. Vol. 74, No. 8, pp: 1329-1334.
35
Rurangwa, E.; Kime, D.E.; Ollevier, F. and Nash, J.P., 2004. The Measurement of sperm motility and factors affecting sperm quality in cultured fish. Aquaculture. Vol. 234, No. 1, pp: 1-28.
36
Smartt, J., 2008. Goldfish Varieties and Genetics: Handbook for Breeders. John Wiley & Sons.
37
Soltan, M.A., 2009. Effect of dietary fish meal replacement by poultry by-product meal with different grain source and enzyme supplementation on performance, feces recovery, body composition and nutrient balance of Nile Tilapia. Pakistan Journal of Nutrition. Vol. 8, No. 4, pp: 395-407.
38
Suzuki, K., 1997. The Goldfish and Japanese. San Ichi Publishing Co., Ltd.
39
Tahoun, A.M.; Mabroke, R.S.; El-Haroun, E.R. and Suloma, A., 2011. Effect of exogenous enzyme supplementation on reproductive performance of broodstock Nile Tilapia reared in a hapa-in-pond hatchery system. In proceedings of the 4th global fisheries and aquaculture research conference, the Egyptian International Center for Agriculture, Giza, Egypt. pp: 61-73.
40
Thongprajukaew, K.; Uthaiwan, K.; Satit, K.; Pisamai, S. and Rungruangsak-Torrissen, K., 2011. Effects of different modified diets on growth, digestive enzyme activities and muscle compositions in juvenile Siamese Fighting Fish (Betta splendens Regan, 1910). Aquaculture. Vol. 322, pp: 1-9.
41
Turner, E. and Montgomerie, R., 2002. Ovarian Fluid enhances sperm movement in Arctic Charr. Journal of Fish Biology. Vol. 60, No. 6, pp: 1570-1579.
42
Wen-ju, W.; Ji-ting1, W.A.N.; Shu-qin, W.U.; Cun-bin, S.H.I. and Cheng, J.I., 2008. Effects of non-starch polysaccharide on activities of protease and Amylase of Hybrid Tilapia (Oreochromis niloticus×O. aureus). Chinese Journal of Animal Nutrition. Vol. 5, 16 p.
43
Wouters, R.; Gomez,L.; Lavens,P. and Calderon,J., 1999. Feeding enriched Artemia biomass to Penaeus vannamei broodstock: Its effect on reproductive performance and larval quality. J of Shellfish Research. Vol. 18, No. 2, pp: 651-656.
44
Wouters, R.; Piguave, X.; Bastidas, L.; Calderon, J. and Sorgeloos, P., 2001. Ovarian maturation and haemolymphatic vitellogenin concentration of Pacific White Shrimp Litopenaeus vannamei (Boone) fed increasing levels of total dietary lipids and HUFA. Aquaculture Research. Vol. 32, No. 7. pp: 573-582.
45
Wouters, R.; Lavens, P.; Nieto, J. and Sorgeloos, P., 2001. Penaeid Shrimp broodstock nutrition: An updated review on research and development. Aquaculture. Vol. 202, No. 1, pp: 1-21.
46
Xu, X.L.; Ji, W.J.; Castell, J.D. and O’dor, R.K., 1994. Influence of dietary lipid sources on fecundity, egg hatchability and fatty acid composition of Chinese Prawn (Penaeus chinensis) broodstock. Aquaculture. Vol. 119, No. 4, pp: 359-370.
47
Yildirim, Y.B. and Turan, F., 2010. Effects of exogenous enzyme supplementation in diets on growth and feed utilization in African Catfish, Clarias gariepinus. Journal of animal and veterinary advances. Vol. 9, No. 2, pp: 327-331.
48
Zamini, A.; Kanani, H.; Esmaeili, A.; Ramezani, S. and and Zorie Zahara, S., 2012. Effects of two dietary exogenous multi-enzyme supplementation, Natuzyme® and Beta-Mannanase (Hemicell®), on growth and blood parameters of Caspian Salmon (Salmo trutta Caspius). Comparative Clinical Pathology. pp: 1-6.
49
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی پتانسیل پروبیوتیکی باکتری های اسیدلاکتیک جدا شده از دستگاه گوارش ماهی اسکار (Astronotus ocellatus)
باکتریهای اسیدلاکتیک، متداولترین نوع باکتریهایی هستند که بهعنوان پروبیوتیک معرفی شدهاند. درمطالعه حاضر ابتدا بهمنظور جداسازی باکتریهای اسیدلاکتیک، نمونه گیری از روده ماهی اسکار انجام شد و مقاومت به املاح صفراوی، تحمل شرایط اسیدی و قابلیت تخمیر قندها مورد یررسی قرارگرفت. در این تحقیق، از روده 50 ماهی اسکار نمونهبرداری صورت گرفت و درمحیط کشت MRS براث کشت داده شد. برای رسیدن به این هدف، باکتریهای اسیدلاکتیک توسط روش های فنوتیپی (رنگ آمیزیگرم، تست کاتالاز، تست حرکت و تستهای بیوشیمیایی) جداسازی شدند و شاخصهای اولیه پروبیوتیکی آن ها مورد ارزیابی قرار گرفت. سپس برای شناسایی مولکولی با جفت آغازگرهای اختصاصی (پرایمر)، ژن 16 S rDNA باکتریهای Lactobacillus acidophilus و Lactobacillus casi با استفاده از PCR تکثیر داده شد. سپس با استفاده از الکتروفورز باند اختصاصی نوع باکتری اسیدلاکتیک مشخص گردید. در پایان تحقیق، بعد از رنگآمیزی و تست PCR، از بین 50 نمونه به تعداد 21 نمونه مثبت Lactobacillus acidophilus و 18 مورد Lactobacillus casei شناسایی و گزارش گردید.
http://www.aejournal.ir/article_92029_b5fc2a7b62964c879f3150a033e30722.pdf
2019-04-21
283
288
لاکتوباسیل اسیدو فیلوس
لاکتو باسیلوس کازئی
ماهی اسکار
پروبیوتیک
عاطفه
بزرگی ماکرانی
atefeh.bozorgi@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی و علوم پزشکی، واحد بابل، دانشگاه آزاد اسلامی، بابل، ایران
AUTHOR
شهلا
جمیلی
shahlajamili42@yahoo.com
2
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
امید
خان محمدی اطاقسرا
bio_kh@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی و علوم پزشکی، واحد بابل، دانشگاه آزاد اسلامی، بابل، ایران
LEAD_AUTHOR
جعفریان، ح.؛ طاعتی کلی، م. و نظرپور، ع.، 1388. بررسی اثر باسیل های پروبیوتیکی بر رشد لارو ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchusmykiss) ازطریق مکمل سازی با آرد دافنی ماگنا (Daphnia magna). مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی. دوره 16، شماره 3، صفحات 48 تا 59.
1
خنافری، آ.؛ اسماعیل زاده، م. و اخوان سپهی، ع.، 1388. ارزیابی توان تولید لاکتوسین ها توسط سویه های پروبیوتیکی در نمونه ماست های محلی. مجله علوم تغذیه و صنایع غذایی ایران. سال 4، شماره 1، صفحات 67 تا 78.
2
صالحی، م.، 1392. ارزیابی اثر آنتاگونیستی لاکتوباسیل های جدا شده از مواد غذایی بومی ایران. نشریه نوآوری در علوم و فناوری غذایی. دوره 5، شماره 1، صفحات 79 تا 84.
3
فرحبخش، م.؛ حکیمی، ح.؛ بهرام آبادی، ر. و ذولفقاری، ن.، 1392. جداسازی لاکتوباسیل های پروبیوتیک از ماست سنتی مناطق روستایی رفستجان و بررسی اثرات ضدمیکروبی آن ها. مجله دانشگاه علوم پزشکی رفسنجان. دوره 12، صفحات 733 تا 746.
4
محمدیان، ت.؛ قربان پور، م.؛ علیشاهی، م.؛ تابنده، م. و غریبی، د.، 1393. جداسازی و شناسایی بیوشیمیایی لاکتوباسیل با توان پروبیوتیکی از روده ماهی شربت. مجله دامپزشکی ایران. سال 10، شماره 2، صفحات 88 تا 97.
5
میر داوودی، ف.؛ قائمی، ن.؛ میرپور، م. و کاظمی درسنکی، ر .، 1390. اثر محیط کشت برفعالیت های متابولیکی و ضدباکتریایی پروبیوتیک ها. مجله دانشگاه علوم پزشکی قم. دوره 5، شماره 4، صفحات 43 تا 58.
6
Allameh, S.K.; Noamanand, V. and Nahavandi, R., 2017. Effects of probiotic Bacteria on Fish Performance. Advanced Techniques in Clinical Microbiology. Vol. 1, No. 2, pp: 11-28.
7
Aroutcheva Alla, A.; Simoes Jose, A. and Sebastian, F., 2001. Antimicrobial protein produced by vaginal Lactobacillus acidophilus that inhibits Gardnerella vaginalis. US National Library of Medicine National Institutes of Health. Vol. 9, No. 1, pp: 33-39.
8
Andanil H.R.; Tukmechi, A.; Meshkini, S. and Sheikhzadeh, N., 2012. Antagonistic activity of two potential probiotic bacteria from fish intestines andinvestigation of their effects on growth performance and immune response in rainbowtrout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Applied Ichthyology. Vol. 8, No. 5, pp: 728-734.
9
Behnsen, J.; Deriu, E.; Sassone-Corsi, M. and Raffatellu, M., 2013. Probiotics: Properties, Examples, and Specific Applications. Cold Spring Harb Perspect Med. Mar. Vol. 3, No. 3, pp: 74-92.
10
Cardinal, M.J.; Meghrous jlacroix, C. and Simard, R.E., 1997. Isolation of lactococcus lactic strain producing inhibitory activity against listeria. food Biotechnology. Vol. 11, pp:129-146.
11
Chateau, N.; Deschamp, A.M. and Hadj Sassi, A., 1994. Heterogeneity of bile salts resistance in the Lactobacillus isolates of a probiotic consortium. Letters in Applied Microbiology. Vol. 18, PP: 42-44.
12
Dimitonova, S.P.; Bakalov, B.V.; Aleksandrova Georgieva, R.N. and danova, S.T., 2008. Phenotypic and molecular identification of Lactobacilli from vaginal secretions. Journal of Microbiology, lmmunology and Infection. Vol. 41, No. 6, pp: 469-477.
13
Diaz, M.A.; Bik, E.M.; Carlin, K.P.; Venn-Watson, S.K.; Jensen, E.D.; Jones, S.E.; Gaston, E.P.; Relman, D.A. and Versalovic, J., 2013. Identification of Lactobacillus strains with probiotic features from the bottlenose dolphin (Tursiops truncatus). J Appl Microbiol. Vol. 115, No. 4, pp: 1037-1051.
14
Froese, R. and Pauly, D., 2007. Astronotus ocellatus, Oscar. FishBase. Retrieved. Vol. 3, pp: 11-16.
15
Forbes, B.A.; Sahm, D.F. and Weissfeld, A.S., 2013. Diagnostic Microbiology. 13th, Mosby Elsevier, Philadelphia, America. pp: 10-59.
16
Jacobsen, C.N.; Rosenfeldt Nielsen, V.; Hayford, A.E.; Møller, P.L.; Michaelsen, K.F. and Paerregaard, A., 1999. Screening of probiotic activities of forty-seven strains of Lactobacillus spp. by in vitro techniques and evaluation of the colonization ability of five selected strains in humans. Appl Environ Microbiol. Vol. 65, No. 11, pp: 4949-56.
17
Jean Guy, L.; Alejandra, de M.; de LeBlanc, R.; Pinheiro, de K.; Oliveira, S. and Svetoslav, D.T., 2014. Use of Synbiotics (Probiotics and Prebiotics) to Improve the Safety of Foods.
18
Hajibabaei, M.; Singer, A.C.; Hebert, D.N. and Hickey, A., 2002. DNA barcoding: how it comoplements taxonomy, molecular phylogenetics and population genetics. Trends in Genetics. Vol. 6, pp: 520-526.
19
Harrigan, W.F. and McCance, M.E., 1976. Biochemical test for bacteria laboratory method in food and dairy microbiology. Academic Press. London, New York.
20
Klaenhammer, T.R., 2000. Probiotic bacteria: today and tomorrow. Jour of Nutrition. Vol. 130, No. 2, pp: 415-416.
21
Kullander, S.O., 2007. Cichlids: Astronotus ocellatus. Swedish Museum of Natural History. Retrieved. Vol. 03, pp: 16-27.
22
Kwon, H.; Sang, Y.; Eun-Hee, Y.; Seung-Woo, K.; Byoung-Hwa, K. and Tae-Yong, C., 2004. Rapid identification of probiotic Lactobacillus species by multiplex PCR using species-specific primers based on the region extending from 16S rRNA through 23S rRNA. FEMS Microbiology Letters. Vol. 239, No. 2, pp: 267-275.
23
Maragkoudakis, P.A.; Zoumpopoulou, G.; Miaris, C.; Kalantzopoulos, G.; Pot, B. and Tsakalidou, E., 2006. Probiotic potential of Lactobacillus strains isolated from dairy products. Int. Dairy Journal. Vol. 16, No. 3, pp: 189-199.
24
Noraphat, H.;Nisit, W.;Siriporn, R.; Soottawat, B.; Aran, K.H. and Suppasil, M., 2010. Probiotic lactic acid bacteria from Kung-Som: isolatscreening, inhibition of pathogenic bacteria. International Journal of Food Science and Technology. Vol. 45, No. 3, pp: 594-601.
25
Succi, M.; Tremonte, P.; Reale, A.; Sorrentino, E.; Grazia, L. and Pacifico, S., 2005. Bile salt and acid tolerance of Lactobacillus rhamnosus strains isolated from Parmigiano Reggiano cheese. FEMS Microbiol. Vol. 244, No. 1, pp: 129-137.
26
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی کوتیلدون در تعدادی از جورپایان خشکی زی (Crustaceae: Isopoda) در ایران
تکامل جورپایان خشکی زی برای زیستن روی خشکی نیازمند سازش های ریختی، تشریحی و فیزیولوژیک بسیاری بود. وجود کیسه پرورشی یا مارسوپیوم در ماده های باردار ازجمله مهم ترین ویژگی هایی بود که امکان سکونت در زیستگاه های خشک را برای این گروه فراهم کرد. کوتیلدون ها ساختارهایی تخصص یافته می باشند که در داخل مارسوپیوم جورپایان خشکی زی پیشرفته وجود دارند. این اندام ها در ترشح مایع مارسوپیومی، تغذیه و تأمین اکسیژن برای فرزندان درون کیسه پرورشی نقش دارند. در این پژوهش کوتیلدون ها در هفت گونه از جورپایان خشکی زی شامل گونه های Protracheoniscus major، Mongoloniscus persicus، Hemilepistus elongatus، Porcellionides pruinosus، Agabiformius lentus،Porcellio evansi وPorcellio mehrdadi، از نظر شکل، اندازه، تعداد و آرایش مورد بررسی قرار گرفتند. نتایج نشان داد که شکل کوتیلدون ها در همه گونه ها یکسان و مخروطی بود. در تمام گونه ها به جز P. major، چهار کوتیلدون و با آرایش یکی در هر یک از بندهای دوم تا پنجم وجود داشت درحالی که در این گونه، 12 کوتیلدون و با آرایش سه کوتیلدون در هر یک از بندهای دوم تا پنجم وجود داشت.
http://www.aejournal.ir/article_92030_3b3e2d407b829866016e3c98166f80c4.pdf
2019-04-21
289
292
جورپایان خشکی زی
مارسوپیوم
کوتیلدون
ایران
قاسم
محمدی کاشانی
kashani_gm@znu.ac.ir
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه زنجان، زنجان، ایران، صندوق پستی: 313
AUTHOR
عهدیه
عابدینی
ahdiyeh.abedini@ut.ac.ir
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه زنجان، زنجان، ایران، صندوق پستی: 313
LEAD_AUTHOR
Appel, C., 2011. Análise e descrição de estruturas temporárias presentes no período ovígero de isópodos terrestres (Crustacea, Oniscidea). Masters dissertation. Instituto de Biociências da Universidade Federal do Rio Grande do Sul.
1
Hoese, B., 1984. The marsupium in terrestrial isopods. Symposia of the Zoological Society of London.Vol. 53,pp: 65-76.
2
Hoese, B. and Janssen, H., 1989. Morphological and physiological studies on the marsupium in terrestrial isopods. Monitore Zoologico Italiano, Nuova Serie,Monografia. Vol. 4, pp: 153-173.
3
Hornung, E., 2011. Evolutionary adaptation of oniscidean isopods to terrestrial life: Structure, physiology and behavior. Terrestrial Arthropod Reviews. Vol.4, pp: 95-130.
4
Lewis, F., 1991. The relationship between broodpouch cotyledons, aridity and advancement. pp. 81-88.In, Juchault, P. and Mocquard, J. (Editors). The Biology of Terrestrial Isopods III. Proceedings of the third international symposium on the biology of terrestrial Isopods. Universiteit de Poitiers, France. Publisher. Poitiers, France. 221 p.
5
Lewis, F., 1989. Themes and Variations: Broodpouch cotyledons in Australian Oniscidae. Isopoda. Vol. 3, pp: 19-27.
6
Schmalfuss, H., 1998. Evolutionary Strategies of the Antennae in Terrestrial Isopods. Journal of Crustacean Biology. Vol. 18, pp: 10-24.
7
Schmidt, C., 2008. Phylogeny of the terrestrial Isopoda (Oniscidea): a review. Arthropod Systematics and Phylogeny. Vol. 66, No. 2, pp: 191-226.
8
Vandel, A., 1925. Recherches sur la sexualité des Isopodes. Les conditions naturelles de la reproduction chez les Isopodes terrestres. Bulletin Biologique de la France et de la Belgique. Vol.59, pp: 317-371.
9
Warburg, M.R., 1968. Behavioral adaptations of terrestrial isopods. American Zoologist. Vol. 8, No 3, pp: 545-559.
10
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی فعالیت ضدمیکروبی باکتری های جدا شده از روده، آب و رسوبات محیط پرورش میگوی سفید غربی (Litopenaeus vannamei) درمنطقه چوئبده آبادان
با استفاده از پروبیوتیک ها به عنوان ارگانیسم هایی که می توانند سبب افزایش سلامتی و مقاومت به بیماری ها در میزبان شوند، می توان مصرف آنتی بیوتیک ها را در آبزی پروری کاهش داد. در این بررسی ابتدا اقدام به جداسازی باکتری های اسیدلاکتیک، انتروکوکوس و باسیلوس ها از روده، آب و رسوبات محیط پرورش میگوی سفید غربی (Litopenaeus vannamei) درمنطقه چوئبده آبادان گردید و سپس خاصیت ضدمیکروبی باکتری های جدا شده علیه باکتری های بیماری زای ویبریو هارویی، یرسینیا روکری، آئروموناس هیدروفیلا و لاکتوکوکوس گارویه به دو روش کشت خطی و چاهک گذاری در آگار (انتشار در آگار) مورد بررسی قرار گرفت. براساس نتایج به دست آمده هیچ کدام از جدایه های باسیلوس و انتروکوکوس با هر دو روش فوق خاصیت ضدمیکروبی علیه باکتری های بیماری زا نداشتند ولی اکثر جدایه های باکتری های اسیدلاکتیک دارای خاصیت ضدمیکروبی بودند. سپس سه جدایه باکتریایی با بالاترین قدرت ضدمیکروبی (جدایه های 93، 94 و 95) با استفاده از توالی ژنS rRNA16 تعیین هویت گردیدند و هر سه جدایه بعد از توالی یابی سویه هایی از لاکتوباسیلوس پلانتاروم مشخص گردیدند. لذا براساس نتایج این تحقیق، ازاین جدایه ها پس از بررسی های برون تنی و درون تنی، می توان جهت اهداف پروبیوتیک در صنعت پرورش آبزیان به خصوص میگو در کشور استفاده نمود.
http://www.aejournal.ir/article_92073_1c76408cde15fbe8ab6d772d50b3bd02.pdf
2019-04-21
293
302
فعالیت ضدمیکروبی
پروبیوتیک
میگوی سفید غربی
لاکتوباسیلوس پلانتاروم
چوئبده
زهرا
محمدی مکوندی
z.makvandi@yahoo.com
1
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
مهرزاد
مصباح
m.mesbah@scu.ac.ir
2
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
داریوش
غریبی
d.gharibi@scu.ac.ir
3
گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
مجتبی
علیشاهی
alishahimoj@gmail.com
4
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
مسعود
قربانپور
m.ghorbanpoor@scu.ac.ir
5
گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
آهنگرزاده، م.؛ قربانپور، م.؛ پیغان، ر.؛شریف روحانی،م. و سلطانی، م.،1394. نقش آئروموناس هیدروفیلا در سپتی سمی های باکتریایی کپورماهیان پرورشی استان خوزستان. مجله دامپزشکی ایران. دوره 11، شماره 3، صفحات 5 تا 16.
1
خسروی دارانی، ک. و کوشکی، م.ر.، 1387. پروبیوتیک ها در شیر و فرآورده های آن. انتشارات مرز دانش. 268 صفحه.
2
رحمتی اندانی، ح.؛ توکمه چی، ا.؛مشکینی،س. و ابراهیمی، ه.، 1390. افزایش مقاومت ماهی قزل آلای رنگین کمان در برابر عفونت با آئروموناس هیدروفیلا و یرسینیا روکری با استفاده از لاکتوباسیل های جدا شده از روده ماهی کپور معمولی. مجله دامپزشکی ایران. دوره 7، شماره 2، صفحات 26 تا 35.
3
سلطانی، م.؛ رئیسی،م.،؛ گودرزی،م.ع.؛ممتاز،ح. و مومنی، م.، 1391. تعیین فراوانی لاکتوکوکوس گارویه عامل بیماری لاکتوکوکوزیس در مزارع پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان استان چهارمحال و بختیاری و تعیین توالی ژن16S rRNA جدایه های حاصله. مجله دامپزشکی ایران. دوره 8، شماره 1، صفحات 61 تا 67.
4
شهرانی، م.؛ رئیسی، م. و تاجبخش، ا.، 1393. مطالعه فراوانی و مقاومت دارویی باکتری لاکتوکوکوس گارویه در ماهیان قزل آلای رنگین کمان در استان چهارمحال و بختیاری. فصلنامه زیست شناسی میکروارگانیسم ها. شماره 11، صفحات71 تا 78.
5
صالحی، م. و حاتمی، ز.، 1393. بررسی مولکولی در حضور ژن انتروسین A در میان سویه های انتروکوکوس فاسیوم مسیر گوارشی و تاثیر ضدمیکروبی این باکتریوسین علیه عوامل بیماری زای بیمارستانی. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. سال 8، شماره 1، صفحات 17 تا 26.
6
علیشاهی، م.، 1388. مقدمهای بر ایمنی شناسی آبزیان. انتشارات دانشگاه شهید چمران اهواز. 499 صفحه.
7
کریم زاده، ص.؛ بهمنش، ش. و نادری، ع.، 1394. فواید و کاربرد پروبیوتیک ها در صنعت آبزی پروری. انتشارات پرتو واقعه. چاپ سوم. 55 صفحه.
8
محمدیان،ت.؛قربانپور،م.؛علیشاهی،م.؛تابنده،م.ر. و غریبی،د.،1393. جداسازی و شناسایی بیوشیمیایی لاکتوباسیل های با توان پروبیوتیکی از روده ماهی شیربت. مجله دامپزشکی ایران. دوره 10، شماره 2، صفحات 87 تا 97.
9
مصباح، م.؛ محمدیان، ت.؛ دادار، م. و غریبی، د.، 1395. بیوتکنولوژی و میکروبیولوژی در آبزی پروری. انتشارات دانشگاه شهید چمران اهواز. 405 صفحه.
10
موسسهتحقیقاتعلومشیلاتیکشور. 1394. تعیین هویت و شناسایی عوامل بیماری زای عفونی آبزیان کشور و راهکارهای پیشگیری. کنترل و درمان آن ها. سازمان تحقیقات. آموزش و ترویج کشاورزی. 154 صفحه.
11
میربخش، م. و باصری، س.، 1395. آشنایی با بیماری ویبریوزیس ناشی از ویبریو هارویی در میگو. فصلنامه میگو و سخت پوستان. دوره 1، شماره 2، صفحات 23 تا 25.
12
Allameh, S.K.; Daud, H.; Mohammad Yusoff, F.; Saad, C.R. and Ideris, A., 2012. Isolation, identification and characterization of Leuconostoc mesenteroides as a new probiotic from intestine of snakehead fish (Channa striatus), African J of Biotechnology. Vol. 11, No. 16, pp: 3810-3816.
13
Aly, S.M.; Ahmed, Y.A.G.; Ghareeb, A.A.A. and Mohamed, M.F., 2008. Studies on Bacillus subtilis and Lactobacillus acidophilus, as potential probiotics, on the immune response and resistance of Tilapia nilótica (Oreochromis niloticus) to challenge infections. Fish Shell Immunology. Vol. 25, pp:128-136.
14
Barman, P.; Banerjee, A.; Bandyopadhyay, P.; Chandra Monda, K. and Kumar Das Mohapatra, P., 2011.Isolation, identification and molecular characterization of potential probiotic bacterium, Bacillus subtilis PPP 13 from Penaeus monodon. Research Article, Journal of Biotechnology, Bioinformatic and Bioengineering. Vol. 1, No. 4, pp: 473-482.
15
Bisht, A. and Pandey, N., 2013. Influence of probiotic administration, donminant gut bacterial strain Bacillus subtilus on growth performance of Labeo rohita (Hamilton) fingerlings. International Journal of Life Sciences Biotechnology and Pharma Research. Vol. 2, pp: 386-392.
16
Brock, T.D. and Clyne, J., 1984. Significance of algal excretory products for growth of epilimnetic bacteria. Applied and Environmental Microbiology. Vol. 47, pp: 731-734.
17
Buntin, N.; Chanthachum, S. and Hongpattarakere, T., 2008. Screening of lactic acid bacteria from gastrointestinal tracts of marine fish for their potential use as probiotics. Songklanakarin Journal of Science and Technology. Vol. 30, No. 1, pp: 141-148.
18
Dhanalakshmi, P. and Ramasubramanian, V., 2017. Effect of Probiotics and Prebiotics Supplemented Diets on Immune Resistance against Aeromonas hydrophila in Mrigal Carp. Annals of aquaculture & research. Vol. 4, No. 3, p: 1042.
19
Food and Agriculture Organization of the United Nations. 2016. Fisheries and Aquaculture Department. FAO Global Aquaculture Production.
20
Filho-Lima, J.V.M.; Vieira, E.C. and Nicoli, J.R., 2000. Antagonistic effect of Lactobacillus acidophilus, Saccharomyces boulardii and Escherichia coli combinations against experimental infections with Shigella flexneri and Salmonella enteritidis sub sp. typhimurium in gnotobiotic mice. J of Applied Microbiology. Vol. 88, pp: 365-370.
21
Gatesoupe, F.J., 2008. Updating the importance of lactic acid bacteria in fish farming: natural occurrence and probiotic treatments. Journal of Molecular Microbiology and Biotechnology. Vol. 14, pp: 107‑114.
22
Johnson, J.L., 1994. Similarity analysis of rRNAs. In Methods for General and Molecular Bacteriology ed. Gerhardt, P.; Murray, R.G.E.; Wood, W.A. and Krieg, N.R. pp: 625-700.
23
Jayanth, K.; Jeyasekaran, G. and Shakila, R.J., 2001. Biocontrol of Fish Bacterial Pathogens by the Antagonistic Bacteria isolated from the Coastal Waters of Gulf of Mannar, India. Bulletin of European Association of Fish Pathologist. Vol. 21, pp: 12-18.
24
Kesarcodi-Watson, A.; Kaspar, H.; Lategan, M.J. and Gibson, L., 2008. Probiotics in aquaculture: The need, principles and mechanisms of action and screening processes. Aquaculture. Vol. 274 pp: 1-14.
25
Khalid, F.; Siddiqi, R. and Mojgani, N., 1999. Detection and Characterization of a Heat Stable Bacteriocin (Lactocin LC-09) Produced by a Clinical Isolate of Lactobacilli. Medical J of Islamic academy of science. Vol. 12, pp: 67-71.
26
Kumar, G.; Menanteau-Ledouble, S.; Saleh, M. and El Matbou, M., 2015. Yersinia ruckeri, the causative agent of enteric redmouth disease in fish. Veterinary Research. Vol. 46, pp: 103-113.
27
McKeegan, K.S.; Borges-Walmsley, M.I. and Walmsley, A.R., 2002. Microbial and viral drug resistance mechanisms. Trends in Microbiology. Vol. 10, pp: 8-14.
28
Mirbakhsh, M.; Akhavansepahy, A.; Afsharnasab, M.; Khanafari, A. and Razavi, M.R., 2013. Screening and evaluation of indigenous bacteria from the Persian Gulf as a probiotic and biocontrol agent against Vibrio harveyi in Litopenaeus vannamei post larvae. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 12, No. 4, pp: 873-886.
29
Nikoskelainen, S.; Ouwehand, A.; Salminen, S. and Bylund, G., 2001. Protection of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) from furunculosis by Lactobacillus rhamnosus. Aquaculture. Vol. 198, No. 3-4, pp: 229-236.
30
Ogbonnia, S.O.; Enwuru, N.V.; Onyemenem, E.U.; Oyedele, G.A. and Enwuru, C.A., 2008. Phytochemical evaluation and antibacterial profile of Treculia africana Decne bark extract on gastrointestinal bacterial pathogens. African Journal of Biotechnology. Vol. 7, pp: 1385-1389.
31
Pybnus, V.; Loutit, M.W.; Lamont, L.L. and Tagg, J.R., 1994. Growth inhibition of the salmon pathogen Vibrio ordalii by a siderophore produced by Vibrio anguillarum strain VL 4335.Journal of Fish Disease. Vol. 17, pp: 311-324.
32
Ravaei, A.; Heshmati poor, Z.; Zahraei Salehi, T.; Ashrafi Tamai, I.; Ghane M. and Derakhshan pour, J., 2013. Evaluation of Antimicrobial Activity of Three Lactobacillus spp. against Antibiotic Resistance Salmonella typhimurium. Advanced Studies in Biology. Vol. 5, pp: 61-70.
33
Ringo, E.; Løvmo, L.; Kristiansen, M.; Bakken, Y.; Salinas, I.; Myklebust, R.; Olsen, R.E. and Mayhew, T.M., 2010. Lactic acid bacteria vs. pathogens in the gastrointestinal tract of fish. Aquaculture Research. Vol. 41, pp: 451-467.
34
Ringø, E. and Gatesoupe, F.J., 1998. Lactic acid bacteria in fish: a review. Aquaculture. Vol. 160, No. 3-4, pp: 177-203.
35
Shakibazadeh, S.; Saad Che, R.; Hafezieh, M.; Christianus, A.; Saleh Kamarudin, M. and Sijam, K., 2012. A putative probiotic isolated from hatchery reared juvenile Penaeus monodon. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 11, No. 4, pp: 849-866.
36
Sivakumar, N.; Sundararaman, M. and Selvakumar, G., 2012. Probiotic effect of Lactobacillus acidophilus against vibriosis in juvenile shrimp (Penaeus monodon). African J of biotechnology Vol. 11, No. 91, pp: 15811-15818.
37
Sreenivasulu, P.; Suman Joshi, D.S.D.; Narendra, K.; Venkata Rao, G. and Krishna Satya, A., 2016. Bacillus pumilus as a potential probiotic for shrimp culture. International Journal of Fisheries and Aquatic Studies. Vol. 4, No. 1, pp: 107-110.
38
UNWFP. 2005. The state of food insecurity in the world. Food and Agriculture Organization, United Nations World Food Programme.
39
Vieira, F.N.; Jatobá, A.; Luiz Pedreira Mouriño, J.; Vieira, E. A.; Soares, M.; Silva, B.C.; Seiffert, W.Q.; Martins, M.L. and Vinatea, L. A., 2013. In vitro selection of bacteria with potential for use as probiotics in marine shrimp culture, Pesquisa Agropecuária Brasileira, Vol. 48, pp: 998-1004.
40
Voravuthikunchai, S.P.; Bilasoi, S. and Supamala, O., 2006. Antagonistic activity against pathogenic bacteria by human vaginal lactobacilli. Anaerobe. Vol. 12, pp: 221-226.
41
Widanarni, W.; Nopitawati, T. and Jusadi, D., 2015. Screening of probiotic bacteria candidates from gastrointestinal tract of pacific white shrimp Litopenaeus vannamei and their effects on the growth performances. Research J of Microbiology. Vol. 10, No. 4, pp: 145-157.
42
Zapata, A.A. and Lara-Flores, M., 2013. Antimicrobial Activities of Lactic Acid Bacteria Strains Isolated from Nile Tilapia Intestine (Oreochromis niloticus). Journal of Biology and Life Science. Vol. 4, No. 1, pp: 164-171.
43
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثرات سطوح مختلف سختی و نسبتهای مختلف کلسیم و منیزیم سختی آب بر عملکرد تولیدمثلی سیست و کیفیت لارو پریان میگو Phallocryptus spinosa
سختپوستان راستة آنوستراکا، با توجه به اندازة مناسب و ارزش غذایی نسبتاً مطلوب، پتانسیل بسیار مناسبی بهعنوان غذای زنده برای گونههای مختلف آبزیان ارزشمند دارند. عملکرد زیستی تمامی آبزیان بهصورت مستقیم و یا غیرمستقیم تحت تأثیر خواص فیزیکوشیمیایی آب قرار دارند. برای موجودات زنده اکوسیستم های آبی، عوامل غیرزنده نظیر دما، سختی آب و pH ازجمله مهم ترین عوامل در موفقیت رشد و تولیدمثل میباشند. این تحقیق با هدف بررسی اثرات سطوح مختلف سختی و نسبتهای مختلف کلسیم و منیزیم سختی آب بر عملکرد تولیدمثلی سیست و کیفیت لارو پریان میگو گونة Phallocryptus spinosaانجام گردید. در این تحقیق تیمار شاهد (آب آزمایشگاه با سختی 110 میلیگرم در لیتر) و 3 سطح سختی 200، 500، 1000 میلی گرم در لیتر برحسب کربنات کلسیم درنظر گرفته شد. سپس در سختیهای مورد آزمایش با افزودن کلرید کلسیم و کلرید منیزیم به آب پایة آزمایشگاه نسبت هایمختلفکلسیم به منیزیم شامل 100:0، 80:20، 50:50، 20:80 و 0:100 تهیه شد و سیستهای پریان میگوها به تیمارهای مورد نظر وارد شد. شاخصهای ارزیابی عملکرد تولیدمثلی و کیفیت لارو شامل درصد تفریخ سیست، اندازة لارو و درصد تلفات لاروها بودند. نتایج اثرات سطوح مختلف سختی و نسبتهای مختلف کلسیم و منیزیم بر روی عملکرد سیست پریان میگو نشان داد که بهترین (0/05≥P) میزان سختی برای تفریخ این گونه با میانگین 25/7%، سختی 500 میلی گرم در لیتر کربنات کلسیم و بهترین نسبت کلسیم و منیزیم با میانگین 62% نیز نسبت 50:50 می باشد. هم چنین افزایش میزان سختی، افزایش معنیدار اندازه ناپلیها و هم چنین میزان مرگ و میر آن ها را به همراه داشت.
http://www.aejournal.ir/article_92078_97434f9cacaba70adc699fe58604f439.pdf
2019-04-21
303
308
فالوکریپتوس اسپینوزا
سختی
کلسیم
منیزیم
کیفیت لارو
پوریا
غلام زاده
p_gholamzadeh@ut.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
کامران
رضایی توابع
krtavabe@ut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
غلامرضا
رفیعی
ghrafiee@ut.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
مسعود
صیدگر
seidgar21007@yahoo.com
4
مرکز تحقیقات آرتمیای کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ارومیه، ایران
AUTHOR
آتشبار، ب؛ مناففر، ر؛ آق، ن؛ فلاحتی، آ؛ مشتاقیان، م.، 1392. اولین گزارش مشاهده Phallocryptus spinosa از استان های یزد و فارس در جنوب ایران. مجله علوم و فنون دریایی. دوره 12 ، شماره 2.
1
صیدگر، م؛ آذری تاکامی، ق.؛ امینی، ف. و وثوقی، غ.، 1386. بررسی انتشار جغرافیائی گونه های موجود پریان میگوها در استان آذربایجان شرقی. مجله دامپزشکی ایران. دوره 3، شماره 2.
2
Adhikari, S.V.S; Chaurasia, A.; Naqavi, A. andPillai, B.R., 2007. Survival and growth of Macrobrachium rosenbergii (de Man) juvenile in relation to calcium hardness and bicarbonate alkalinity. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 7, pp: 23-26.
3
Ali, A., 1995. Aspects of the biology of the freshwater fairy shrimp, Streptocephalus proboscideus (Crustacea: Anostraca). Ph. D. thesis. Ghent University. 155 p.
4
Anderson, G. and Sheau, Y.H., 1990. Growth and maturation of a North American fairy shrimp, Streptocephalus seali (Crustacea; Anostraca): a laboratory study. Vol. 24, No. 3, pp: 429-442.
5
Atashbar, B.; Agh, N.; Stappen, G.; Mertens, J. and Beladjal, L., 2014. Combined effect of temperature and salinity on hatching characteristics of three fairy shrimp species (Crustacea: Anostraca). Journal of limnology. Vol. 73, No. 3, pp: 28-39.
6
Brtek, J. and Mura, G., 2000. Revised key to and genera of the anostraca with notes on their geographical distribution. Curstaceana. Vol. 73, No. 9, pp: 1037-1088.
7
Clyde, E. and Denton, B., 1999. fairy shrimp of California puddle, poolsand playas.
8
Davis, D.A; Lawrence, A.L. and Gatlin, D.M., 1993. Response of Penaeus vannamei to dietary calcium, phosphorus and calcium: phosphorus ratio. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 24, pp: 504-515.
9
Fieber, L.A. and Lutz, P.L., 1985. Magnesium and calcium metabolism during molting in the freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii. Canadian Journal of Zoology. Vol. 63, pp: 1120-1124.
10
Gillis, P.L.; Mitchell, R.J.; Schwalb, A.N.; McNichols, K.A.; Mackie, G.L.; Wood, C.M. and Ackerman, J.D., 2008. Sensitivity of the glochidia (larvae) of freshwater mussels to copper: Assessing the effect of water hardness and dissolved organic carbon on the sensitivity of endangered species. Aquat. Toxicol. Vol. 88, pp: 137-145.
11
Greenaway, P., 1993. Calcium and magnesium balance during molting in land crabs. Journal of Crustacean Biology. Vol. 13, pp: 191-197.
12
Greenway, P., 1985. Calsium balance and moulting in crustacea. Biological reviows. Vol. 60, pp: 425-454.
13
Kim, A.D.; Gu, M.B.; Allen, H.E. and Cha, D., 2001. Physiochemical sactors affecting the sensitivity of Ceriodaphnia bulba to copper. Environ. Monit. Assess. Vol. 70, pp: 105-116.
14
Kim, Y.; Mo, H. and Son, J., 2015. Interactive effects of water pH and hardness levels on the growth and reproduction of (Crustacea: Ostracoda). Hydrobiologia. Vol. 753, No. 97.
15
Luo, S.; Wu, B. and Wang, J., 2016. Effects of Total Hardness and Calcium: Magnesium Ratio of Water during Early Stages of Rare Minnows (Gobiocypris rarus). Comp Med. Vol. 66, No. 3, pp: 181-187.
16
Markich, S.J.; King, A.R and Wilson, S.P., 2006. Non effect water hardness on the accumulation and toxicity of copper in a freshwater macrophyte (Ceratophyllum demersum). How useful are hardness-modified copper guidelines for protecting freshwater biota Chemosphere. Vol. 65, pp: 1791-1800.
17
Martins, R.J.E.; Pardob, R. and Boaventura, R.A.R., 2004. Cadmium II and zinc (II) adsorption by the aquatic moss Fontinalis antipyretica: effect of temperature, pH and water hardness. Water Res. Vol. 38, pp: 693-699.
18
Pyle, G.G.; Swanson, S.M. and Lehmkuht, D.M., 2002. The influence of water hardness, pH and suspended solids onnickel toxicity to larva fathead minnows (Pimephales promelas). Water, Air, Soil Pollut. Vol. 133, pp: 215-222.
19
Rathor, R.S. and Khangarot, B.S., 2003. Effects of water hardness and metal concentration on a fresh water Tubifex tubifex muller. Water, Air, Soil Pollut. Vol. 142, pp: 341-356.
20
Rezaee tavabe, K.; Rafiee, G.; Frinsko, M. and Daniels, H., 2013. Effects of different calcium and magnesium concentrations separately and in combination on Macrobrachium rosenbergii larviculture. Aquaculture. Vol. 412, pp: 160-166.
21
Rezaei tavabe, K.; Rafiee, G.; Shoeiry, M.M. and Houshmandi, S., 2015. Effects of Water Hardness and Calcium: Magnesium Ratios on Reproductive Performance and Offspring Quality of Macrobrachium rosenbergii. Journal of the world aquaculture society. Vol. 46, No. 5.
22
Roy, L.A.; Davis, D.A.; Nguyen, T.N. and Saoud, I.P., 2009. Supplementation of chelated magnesium to diets of the pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei, reared in low-salinity waters of west Alabama. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 40, pp: 248-254.
23
Vedamanikam, V.J. and Shazilli, N.A.M., 2008. Comparative toxicity of nine metals to two Malaysian aquatic Dipterian larvae with reference to temperature variation. Bull. Environ.Contam. Toxicol. Vol. 80, pp: 516-520.
24
Wurts, W.A. and Durborow, R.M., 1992. Interactions of pH, Carbon Dioxide, Alkalinity and Hardness in Fish Ponds. Southern Regional Aquaculture Center. SRAC Publication. 464 p.
25
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات تلقیح مصنوعی و جفت گیری طبیعی بر عملکرد کلنی های زنبور عسل ایرانی (Apis mellifera M.)
تلقیح مصنوعی یک ابزار مهمی است که کنترل کامل جفت گیری زنبور عسل برای اهداف تحقیقاتی و اصلاح نژادی را فراهم می سازد. در این تحقیق اثرات جفتگیری طبیعی و تلقیح مصنوعی بر عملکرد کلنی های زنبور عسل ایرانی (Apis mellifera M) مورد بررسی قرار گرفت. برای انجام آزمایش 10 کندو برای جفت گیری طبیعی و 10 کندو برای تلقیح مصنوعی درنظر گرفته شد. صفات مورد بررسی در این آزمایش شامل اندازه گیری جمعیت بالغ زنبورها، زنده مانی نوزادان، رفتار بهداشتی و جمع آوری گرده بودند. مقایسات داده ها بر مبنای آزمون T انجام گرفت. نتایج آزمایش نشان داد که میزان جمعیت در گروه تلقیح مصنوعی در مقایسه با گروه جفت گیری طبیعی به طور معنی داری در فصول بهار و پاییز بیش تر بود (0/05>P). صفت رفتار بهداشتی در کلنی های تلقیح شده به صورت مصنوعی در فصل پاییز به طور معنی داری بهتر از گروه جفت گیری طبیعی بود (0/05>P). اختلاف آماری معنی داری در صفت زنده مانی نوزادان در دو فصل بین دو گروه تلقیح مصنوعی و جفت گیری طبیعی مشاهده نگردید. در فصل پاییز جمع آوری گرده گل در کلنی های تلقیح مصنوعی به طور معنی داری بیش تر از کلنی های جفت خورده طبیعی بود (0/05>P). به طور کلی نتایج نشان داد که عملکرد گروه تلقیح مصنوعی در مقایسه با گروه جفت گیری طبیعی بهتر بود.
http://www.aejournal.ir/article_89303_93f8e54152137df7d89aa265677e3640.pdf
2019-04-21
309
314
تلقیح مصنوعی
فصل
عملکرد
زنبور عسل
حسین
محب الدینی
mohebodini@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
سهیلا
بایزیدی آذر
soheila.azari68@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
رضا
سید شریفی
reza_seyedsharifi@yahoo.com
3
گروه علوم دامی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
LEAD_AUTHOR
نعمت
هدایت ایوریق
hedayatuma@gmail.com
4
گروه علوم دامی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
جمال
سیف دواتی
jseifdavati@yahoo.com
5
گروه علوم دامی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
تاج آبادی، ن.؛ جواهری، د.؛ طهماسبی، غ. و فرشینه عدل، م.، 1389. مقایسه عملکرد ملکه های تلقیح مصنوعی شده با ملکه های جفت خورده طبیعی، موسسه تحقیقات علوم دامی کشور. گزارش نهایی طرح تحقیقاتی.
1
Abdulaziz, S.; Qarni, AL.; Smith, H.B.and Cobey, S., 2003. Performance Evaluation of Naturally mated and instrumentally inseminated honey bee Queens in field colonies. Pakistan journal of biological sciences. Vol. 1, pp: 1476-1481.
2
Bigio, G.; Schürch, R. and Ratnieks, F.L.W., 2013. Hygienic behavior in honey bees (Hymenoptera: Apidae): effects of brood, food, and time of the year. Journal of Economic Entomology. Vol. 106, No. 6, pp: 2280-2285.
3
Bigio, G.; Al Toufailia, H.; Hughes, W.O.H. and Ratnieks, F.L.W., 2014. The effect of one generation of controlled mating on the expression of hygienic behaviour in honey bees. Journal of Apicultural Research. Vol. 53, No. 5, pp: 563-568.
4
Cermak, K., 2004. Evaluation of artificially inseminated and naturally mated bee queens in Zubli. Czech Republic (in Czech Vcelarstvi). Vol. 57, pp: 148-149.
5
Cobey, W.S., 2007. Comparison studies of instrumentally inseminated and naturally mated honeybee queens and factors affecting their performance. Apidologie. Vol. 38, pp: 390-404.
6
Cobey, W.S.; Tarpy, D.R. and Woyke, J., 2013. Standard methods for instrumental insemination of Apis mellifera queens. Journal of Apicultural Research. Vol. 52, No. 4, pp: 1-18.
7
DeGrandi-Hoffman, G.; Wardell, G.; Ahumada-segura, F.; Rinderer, T.; Danka, R. and Pettis, J., 2008. Comparisons of pollen substitute diets for honey bees: consumption rates by colonies and effects on brood and adult populations. Journal of apicultural research and bee world. Vol. 47, pp: 265-270.
8
Delaney, A.D.; Keller, J.J.; Caren, J.R. and Tarpy, D.R., 2010. The physical, insemination, and reproductive quality of honey bee queens (Apis mellifera l.). Apidologie. ©INRA/DIB-AGIB/EDP Sciences.
9
Gençer, H.V. and Kahya1, Y., 2011. The viability of sperm in lateral oviducts and spermathecae of instrumentally inseminated and naturally mated honey bee (Apis mellifera L.) queens. Journal of Apicultural Research. Vol. 50, No. 3, pp: 190-194.
10
Kocher, S.D.; Tarpy, D.R. and Grozinger, C.M., 2010. The effects of mating and instrumental insemination on queen honey bee flight behavior and gene expression. Insect Molecular Biology. Vol. 19, No. 2, pp: 153-162.
11
Laidlaw, H.H.Jr., 2013. Instrumental Insemination of Honey Bee Queens”, Northern Bee Books. pp: 38-63.
12
Mackensen, O., 1947. Effect of carbon dioxide on initial oviposition of artificially inseminated and virgin queen bees, J. Econ. Entomol. Vol. 40, pp: 344-349.
13
Mackensen, O. and Roberts, W.C., 2013. A manual for the Artificial Insemination of Queen Bees, Editura Northern Bee Books. pp: 22-29.
14
Mohebodini, H.; Tahmasbi, G.; Dastar, B.; Jafari Ahangari, Y. and Zerehdaran, S., 2013. Effect of dietary thiamine on growth of the Iranian honey bee colonies (Apis mellifera meda) in different seasons. Agriculture and Forestry. Vol. 59, No. 3, pp: 119-126.
15
Moritz R.F. and Kühnert, M., 1984. Seasonal effects on artificial insemination oh honeybee queen (Apis mellifera L.). Apidologie. Vol.15, pp: 223-231.
16
Pilar, D.R.; Jaffe, R.; Munoz, I.; Serrano, J.; Moritz, R.F.A. and Krauss, B.F., 2013. Conserving genetic diversity in the honeybee, Molecular Ecology. Vol. 22, pp: 3208-3210.
17
Rhodes, J.W.; Harden, S.; Spooner-Hart, R.; Anderson, D.L. and Wheen, G., 2010. Effects of age, season and genetics on semen and sperm production in Apis mellifera drones. Apidologie. ©INRA/DIB-AGIB/EDP Sciences.
18
Sharma, V.P. and Kumar, N.R., 2010. Changes in honeybee behavior and biology under the influence of cellphone radiations. Current Science. Vol. 98, pp: 1376-1378.
19
Szalai, E., 1995. Results of instrumental insemination of queen honey bees in Hungary, Pszcelnicze Zeszyty Nnaukowe. Vol. 39, pp: 6-69.
20
Wu-Smart, J. and Spivak, M., 2016. Sub-lethal effects of dietary neonicotinoid insecticide exposure on honey bee queen fecundity and colony development. Scientific Reports. Vol. 6, pp: 1-11.
21
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه تنوع گونهای زنبورهای خانوادهIchneumonidae در برخی مناطق استان تهران
در پژوهش حاضر، تنوع گونهای زنبورهای خانوادهی Ichneumonidae در برخی مناطق استان تهران مورد مطالعه قرار گرفت. براساس نتایج حاصل، هفده گونه زنبور از هشت زیرخانواده Anomaloninae Viereck, 1918 ، Banchinae Wesmael, 1845، Campopleginae Förster, 1869 ، Cremastinae Förster, 1869 ، Cryptinae Kirby, 1837 ، Ichneumoninae Latreille, 1802 ، Pimplinae Wesmael, 1845 وTryphoninae Shuckard, 1840 جمعآوری و شناسایی شدند. گونههای جمعآوری شده از چهارده جنس بودند که عبارتند از: Barylypa Förster, 1869،Lissonota Gravenhorst 1829، Charops Holmgren, 1859، Dusona Cameron 1901،Pristomerus Curtis, 1836، Temelucha Meyrick, 1909، Cryptus Fabricius, 1804، Glyphicnemis Förster, 1869،Ischnus Gravenhorst, 1829، Meringopus (Förster, 1868)، Ichneumon Linnaeus, 1758، Virgichneumon Heinrich, 1977، Itoplectis Förster 1869 و Tryphon Fallén, 1813. از بین گونههای جمعآوری شده، سه گونه Charops cantator (De Geer, 1778)، Dusona contumax Förster, 1868 و Temelucha genalis (Szépligeti, 1899) گزارشهای جدیدی برای فون ایران میباشند. در این پژوهش علاوه برشناسایی گونههای زنبور، هفت گونه شبپره (Lepidoptera) از خانوادههای Lasiocampidae، Tortricidae، Noctuidae و Nymphalidae به عنوان میزبانهای زنبورهای این تحقیق شناسایی گردیدند.
http://www.aejournal.ir/article_90584_1d515a3e2c4f7e0dba3981dd489867d9.pdf
2019-04-21
315
322
زنبورهایIchneumonidae
تنوع گونهای
پارازیتوئید
تهران
پراکنش
حسن
قهاری
hghahari@yahoo.com
1
گروه گیاهپزشکی، واحد یادگار امام خمینی (ره)، دانشگاه آزاد اسلامی، شهرری، ایران
LEAD_AUTHOR
Аngelova, R., 1983. Parasites of leafrollers (subfamily Tortricinae, Lepidoptera) in apple orchards. Vasil Kolarov Higher Institute of Agriculture, Plovdiv, Scientific Works. Vol. 18, pp: 95-102
1
Barahoei, H.; Rakhshani, E. and Riedel, M., 2012. A checklist of Ichneumonidae (Hymenoptera: Ichneumonoidea) from Iran. Iranian Journal of Animal Biosystematics (IJAB). Vol. 8, pp: 83-132.
2
Barahoei, H.; Rakhshani, E.; Fathabadi, K. and Moradpour, H., 2014a. A survey on the fauna of Ichneumonidae (Hymenoptera) of Khorasan-e-Razavi province. Iranian Journal of Animal Biosystematics (IJAB). Vol. 10, No. 2, pp: 145-160.
3
Barahoei, H.; Nader, E. and Rakhshani, E., 2014b. Cryptinae (Hymenoptera: Ichneumonidae) of Isfahan province, central Iran. Turkish Journal of Zoology. Vol. 39, pp: 279-284.
4
Barahoei, H.; Nader, E. and Rakhshani, E., 2015. A survey on Ichneumonidae of Isfahan province, central Iran. Journal of Crop Protection. Vol. 4, No. 2, pp: 157-166.
5
Borror, D.J.; Triplehorn, C.A. and Johnson, N.F., 1992. An introduction to the study of insects. Sixth edition. Orlando: Saunders College Publishing. 875 p.
6
Common, I.F.B., 1990. Moths of Australia. Melbourne University Press / E. J. Brill, Leiden, NewYork, København, Köln. 535 pp. 32 pls.
7
Çoruh, S. and Kolarov, J., 2010. A review of the Turkish Orthopelmatinae (Insecta: Hymenoptera: Ichneumonidae). Scientific Research and Essays. Vol. 5, No. 22, pp: 3518-3521.
8
Croft, B.A., 1990. Arthropod biological control agents and pesticides. John Wiley & Sons, New York. 723 p.
9
DeBach P. and Rosen, D., 1991. Biological control by natural enemies. Second edition. Cambridge University Press, New York. 440 p.
10
Gauld, I.D., 1991. The Ichneumonidae of Costa Rica, 1. Memoirs of the American Entomological Institute. Vol. 47, pp: 1-589.
11
Ghahari, H., 2014. A study on the subfamily Ichneumoninae (Hymenoptera: Ichneumonidae) from Varamin and vicinity, Iran. Calodema. Vol. 295, pp: 1-2.
12
Ghahari, H., 2016. A study on the fauna of Ichneumonidae (Hymenoptera) in the province of Tehran, Iran. Arquivos Entomoloxicos. Vol. 16, pp: 125-132.
13
Ghahari, H. and Jussila, R., 2014a. A faunistic study on the Ichneumonidae (Hymenoptera: Ichneumonoidea) from the west of Iran. Linzer biologische Beiträge. Vol. 46, No. 2, pp: 1373-1377.
14
Ghahari, H. and Jussila, R., 2014b. A study on the subfamily Ichneumoninae (Hymenoptera: Ichneumonidae) from Khorasan province, Iran. Linzer biologische Beiträge. Vol. 46, No. 2, pp: 1367-1371.
15
Ghahari, H. and Jussila, R., 2015a. Faunistic notes on the Ichneumonid wasps (Hymenoptera: Ichneumonidae) in alfalfa fields in some regions of Iran. Entomofauna. Vol. 36, No. 12, pp: 185-192.
16
Ghahari, H. and Jussila, R., 2015b. A faunistic survey on ichneumonid wasps (Hymenoptera, Ichneumonidae) from some regions of Ilam and Kermanshahprovinces (western Iran). Entomologia Croatica. Vol. 19, No. 1-2, pp: 55-66.
17
Ghahari, H. and Jussila, R., 2016a. Some new records of the subfamilies Ichneumoninae and Tryphoninae (Hymenoptera: Ichneumonidae) from Iran. Arquivos entomolóxicos. Vol. 15, pp: 363-367.
18
Ghahari, H. and Jussila, R., 2016b. Contribution to the knowledge of the fauna of Ichneumonidae (Hymenoptera: Ichneumonoidea) from Iran. Contributions to Entomology (Beiträge zur Entomologie). Vol. 66, No. 1, pp: 119-124.
19
Ghahari, H. and Jussila, R., 2016c. The Ichneumonidae (Hymenoptera) of northern Iran: a faunistic study. Acta Musei Moraviae, Scientiae biologicae (Brno). Vol. 101, No. 1, pp: 55-62.
20
Ghahari, H.; Ostovan, H.; Jussila, R. and Behnood, S., 2014a. A study on Ichneumonidae (Hymenoptera: Ichneumonoidea) from some regions of Khorasan province, north-eastern Iran. Calodema. Vol. 296, pp: 1-2.
21
Ghahari, H.; Jussila, R. and Gadallah, N.S., 2014b. The species of Ichneumonidae (Hymenoptera: Ichneumonoidea) from Markazi province, Iran. Wuyi Science Journal. Vol. 30, pp: 83-91.
22
Ghahari, H. and Gadallah, N.S., 2017. Species diversity of Ichneumonidae (Hymenoptera: Ichneumonoidea) in Tehran province, Iran. Egyptian Journal of Biological Pest Control. Vol. 27, No. 1, pp: 1-5.
23
Godfray, H.C.J., 1994. Parasitoids, behavioral and evolutionary ecology. Princeton University Press. 473 p.
24
Goulet, H. and Huber, J.T., 1993. Hymenoptera of the World: An identification guide to families. Canada Communication Group Publishing, Ottawa. 668 p.
25
Gupta, V.K., 1987. The Ichneumonidae of the Indo-Australian area (Hymenoptera). Memoirs of the American Entomological Institute. Vol. 41, No. 1-2, pp: 1-1210.
26
Hoy, M.A. and Herzog, D.C., 1985. Biological control in agricultural IPM systems. Academic Press, Orlando, FL. 589 p.
27
Humala, A. and Reshchinkov, A., 2014. Ichneumonidae (Hymenoptera) species new to the fauna of Norway. Biodiversity Data Journal. Vol. 2, pp: 1-26.
28
Kasparyan, D.R., 1981. A guide to the insects of the European part of the USSR. Hymenoptera, Ichneumonidae. Opredeliteli Faune SSSR. Vol. 3, No. 3, pp: 1-688.
29
Kogan, M., 1998. Integrated pest management: historical perspectives and contemporary developments. Annual Review of Entomology. Vol. 43, pp: 243-70.
30
Kolarov, J. and Ghahari, H., 2005. A catalogue of Ichneumonidae (Hymenoptera) from Iran. Linzer biologische Beitrage. Vol. 37, pp: 503-532.
31
Kristensen, N.P., 1998. Lepidoptera: Moths and Butterflies 1. Handbuch der Zoologie/Handbook of Zoology, IV/35, Walter de Gruyter, Berlin & New York. 491 p.
32
Lungu Constantineanu, C.Ş., 2009. Parasitoid ichneumonids (Hymenoptera) of some defoliator Tortricidae moths in Bârnova forest massif, Iaşy county. Bulletin Information Society Lepidoptera Romania. Vol: 20,
33
pp: 39-42.
34
Maredia, K.M.; Dakouo, D. and Mota-Sanchez, D., 2003. Integrated pest management in the global arena. Cromwell Press, Trowbridge, U.K. 512 p.
35
Modarres Awal, M., 2012. List of agricultural pests and their natural enemies in Iran. Third edition. Ferdowsi University of Mashhad Press. 759 p.
36
New, T.R., 1997. Butterfly conservation. Second edition. Oxford University Press, South Melbourne, Australia. 248 p.
37
Quicke, D.L.J., 1997. Parasitic wasps. Chapman and Hall. 470 p.
38
Quicke, D.L.J., 2015. The Braconid and Ichneumonid parasitoid wasps: biology, systematics, evolution and ecology. Wiley Blackwell, Chichester. 688 p.
39
Shaw, M.R., 1997. Rearing parasitic Hymenoptera. The Amateur Entomologist. Vol. 25, 46 p.
40
Townes, H., 1969. The genera of Ichneumonidae, part I.Memoirs of the American Entomological Institute. Vol. 11, pp: 1-300.
41
Townes, H., 1970a. The genera of Ichneumonidae, part II. Memoirs of the American Entomological Institute. Vol. 12, pp: 1-537.
42
Townes, H., 1970b. The genera of Ichneumonidae, part III. Memoirs of the American Entomological Institute. Vol. 13, pp: 1-307.
43
Townes, H., 1971. The genera of Ichneumonidae, part IV. Memoirs of the American Entomological Institute. Vol. 17, pp: 1-372.
44
Vane Wright, R.I. and Ackery, P., 1989. Biology of butterflies. Second edition. Academic Press. 429 p.
45
Wahl, D.B. and Sharkey, M.J., 1993. Superfamily Ichneumonoidea, pp: 358-509. In: Goulet, H. and Huber, J.T. (eds), Hymenoptera of the world: An identification guide to families. Ottawa (Agriculture Canada). 668 p.
46
Yu, D.S.; van Achterberg, C. and Horstmann, K., 2012. World Ichneumonoidea 2005. Taxonomy, biology, morphology and distribution [Braconidae]. Taxapad 2006 (Scientific names for information management) Interactive electronical catalogue on DVD/CD-ROM. Vancouver.
47
Zaemdzhikova, G.I., 2017. Ichneumon wasps (Hymenoptera: Ichneumonidae) reared from Tortrix moths (Lepidoptera: Tortricidae) in oak forests in Sofia region, Bulgaria. ActaZoologica Bulgarica, Supplement. Vol. 8,
48
pp: 123-129.
49
Zerova, M.D.; Melika, Z.G.; Tolkanic, W.I. and Kotenka, A.G., 1989. Annotated list of insects parasitizing leafrollers, which damaged apples in the South West of the European part of USSR. Information Bulletin EPS. Vol. 28, pp: 7-69.
50
ORIGINAL_ARTICLE
اثر مهارکنندگی نانوذرات اکسیدآهن با پوشش کیتوسان بر جدایههای بالینی باکتری سودوموناس آئروژینوزا و ارتباط آن با قدرت بیوفیلم باکتری
بیوفیلم ها یکی از دلایل مهم مقاومت سویههای باکتریایی سودوموناس آئروژینوزا به آنتی بیوتیک به شمار می آیند. هدف از این مطالعه بررسی اثر مهارکنندگی نانوذرات اکسید آهن با پوشش کیتوسان بر جدایههای بالینی باکتری سودوناس آئروژینوزا و ارتباط آن با قدرت بیوفیلم باکتری میباشد. نانوذره Fe3O4 از* 6H2O FeCl3 و FeCl2 * 4H2O سنتز شد و با کیتوسان اصلاح ساختار سطحی گردید. ویژگی های نانوذره باRD, FTIR, DLS, TGA و SEM تعیین شد. میزان تولید بیوفیلم در هر سویه بالینی سودوموناس آئروژینوزا براساس روش میکروتیترپلیت اندازهگیری شد. بعد از تیمار سویه ها با نانوذره اکسیدآهن، حداقل غلظت مهارکنندگی (MIC) با روشمیکرودایلوشن براث تعیین گردید. نتایج نشان داد که نانوذره آهن با پوشش کیتوسان در غلظت های متفاوت (0/512 تا 80 میلی گرم/میلی لیتر) تشکیل بیوفیلم در جدایههای بالینی سودوموناس آئروژینوزا را مهار کرده و حداقل غلظت مهارکنندگی تشکیل بیوفیلم نانوذرات در سویه های مختلف متفاوت بود. نانوذره اکسیدآهن پوشش داده شده با کیتوسان می تواند در درمان عفونت های بیوفیلم استفاده شود و به عنوان عوامل ضدمیکروبی جدید با ارزش باشد.
http://www.aejournal.ir/article_92111_8327b6114a8c11f5871583dc09d3d654.pdf
2019-04-21
323
330
سودوموناس آئروژینوزا
بیوفیلم
نانوذرات اکسیدآهن
پرستو
زمانی مزده
paras2.zamani71@gmail.com
1
گروه ژنتیک و بیوتکنولوژی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
شهره
زارع کاریزی
shohrehzare@yahoo.com
2
گروه ژنتیک و بیوتکنولوژی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
LEAD_AUTHOR
راحله
صفایی جوان
safaeijavan@gmail.com
3
گروه بیوشیمی بیوفیزیک، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
Baniasadi, M.; Tajabadi, M.; Nourbakhsh, M. and Kamali, M., 2014. Synthesis and characterization of Core Shell nanostructure containing super Paramagnetic Magnetite and PAMAM Dendrimers. Vol. 8, No. 3, pp: 51-63.
1
Bjamsholt, T.; Jenson, P.O.; Fiandca, M.J.; Pedersen, J.; Hansen, C.R. and Anderson, C.B., 2009. Pseudomonas aeruginosa biofilms in the respiratory tract of cystic fibrosis patients. PediatrPulmonol. Vol. 44, pp: 547-558.
2
Donlan, R.M. and Costerton, J.W., 2002. Biofilms: Survival mechanisms of clinically relevant microorganisms. ClinMicrobiol Rev. Vol. 15, pp: 16-93.
3
Fricks-Lima, J.; Hendrickson, C.M.; Allgaier, M.; Zhuo, H.; Wiener-Kronish, J.P. Lynch, S.V., 2011. Difference in biofilm formation and antimicrobial resistance of Pseudomonas Aeruginosaisolated from airways of mechanically ventilated patients and cystic fibrosis patiens. Intern J Antimicrob agents. Vol. 37, pp: 309-315.
4
Ishida, H.; Ishida, Y.; Kurosaka, Y.; Otani, T.; Sato, K. and Kobayashi, H., 1998. In vitro and in vivo activities of levofloxacin against biofilm-producing Pseudomonas aeruginosa. Antimicrobial agents and chemotherapy. Vol. 42, No. 7, pp: 1641-1645.
5
Kalishwaralal, K.; Barath, M.K.S.; Pandian, S.; Deepak, V. and Gurunathan, S., 2010. Silver nanoparticles impede the biofilm formation by Pseudomonas Aeruginosa and Staphylococcus epidermidis. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. Vol. 79, pp: 340-344.
6
López-Cruz, A.; Barrera, C.; Calero-DdelC, V.L. and Rinaldi, C., 2009. Water dispersible iron oxide nanoparticles coated with covalently linked chitosan. Journal of Materials Chemistry. Vol. 19, No. 37, pp: 6870-6876.
7
Mathur, T.; Singhal, S.; Khan, S.; Upadhyay, D.; Fatma, T. and Rattan, A., 2006. Detection of biofilm formation among the clinical isolates of staphylococci: an evaluation of three different screening methods. Indian journal of medical microbiology. Vol. 24, No. 1, pp: 25-36.
8
Morovati, A.; Ahmad Panahi, H. and Yazdani, F., 2016. Grafting of allylimidazole and n-vinylcaprolactam as a thermosensitive polymer onto magnetic nano-particles for the extraction and determination of celecoxib in biological samples. International Journal of Pharmaceutics. Vol. 513, pp: 62-67.
9
Núñez, N.O.; Tartaj, P.; Morales, M.P.; Bonville, P. and Serna, C.J., 2004. Yttria-coated FeCo magnetic nanoneedles. Chemistry of materials. Vol. 16, No. 16, pp: 3119-3124.
10
O'Toole, G.A., 2011. Microtiter dish biofilm formation assay. J of Visualized Experiments. Vol. 47, pp: 2437-2446.
11
Pier, GB. 2000. Peptide, Pseudomonas aeruginosa, Polysaccharides and lipopolysaccharides players in predicament of cystic fibrosis patients. Trend Microbiolo. Vol. 8, pp: 247-250.
12
Rasamiravaka, Q.L.; Pierre, D. and El Jaziri, M., 2015. The Formation of Biofilms by Pseudomonas aeruginosa: A Review of the Natural and Synthetic Compounds Interfering with Control Mechanisms BioMed Research International. Volume 2015, Article ID 759348, 17 p. http://dx.doi.org/10. 1155/2015/759348.
13
SepehriSeresht, S.; NajarPeerayeh, S.; Sattari, M. and Rezaee, M.A., 2007. Production of plasmid-mediated ß-lactamases in Pseudomonas aeruginosa isolated from burn. Hakim Research Journal. Vol. 10, No. 1, pp: 61-65.
14
Shah Zeidi, Z. and Amiri, G.H., 2013. Synthesis and Study of iron oxide nanoparticles on the growth of Pseudomonas aeruginosa. Second national conference on nanotechnology from theory to application.
15
Tre-Hardy, M.; Vanderbist, F.; Traore, H. and Devleeschouwer, M.J., 2008. In vitro activity of antibiotic combinations against Pseudomonas aeruginosa biofilm and plaktonic cultures. Int J antimcrob agent. Vol. 31, pp: 329-336
16
Unsoy, G.; Yalcin, S.; Khodadust, R.; Gunduz, G. and Gunduz, U., 2012. Synthesis optimization and characterization of chitosan-coated iron oxide nanoparticles produced for biomedical applications. Journal of Nanoparticle Research. Vool. 14, No. 11, pp: 964.
17
Winn, W.C.; Allen, S.D.; Janda, W.; Koneman, E.W.; Procop, G.W. and Schreckenberger, P.C., 2006. Koneman’s Color Atlas and Textbook of Diagnostic Microbiology. 6thed. Philadelphia: Lippincott Williams and Wilkins.
18
Zafari, M.; Jafarpour, M. and Biazar, E., 2012. Antibacterial effects of Iron Oxide nanoparticles in the presence of dispersing agent, Young research club, Tonekabon branch, Islamic Azad university.
19
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر سطوح مختلف شمارش سلول های سوماتیک شیر گاو و افزودن آنزیم لیپاز بر ترکیب اسیدچرب آزاد و خصوصیات حسی پنیر سفید آب نمکی
بیماری ورم پستان به عنوان یک عفونت غدد پستانی که معمولاً ناشی از باکتری های عفونت زا می باشد تعریف می شود. هدف از این تحقیق ارزیابی تاثیر سه سطح سلول سوماتیک در شیر خام و آنزیم لیپاز بر اسیدهای چرب ازاد پنیر سفید آب نمکی و خصوصیات حسی (طعم وبافت) آن در طی یک دوره نگه داری 70 روزه می باشد. در این مطالعه: سه سطح سلول سوماتیک (بالا- متوسط- پایین) ویک سطح آنزیم لیپاز (2%) و سه زمان مشخص از دوره رسیدن (5، 35 و 70 روز) در نظر گرفته شد. در ابتدا سه گروه از گاوهای شیری انتخاب شد تا شیر با سطح سلول سوماتیک پایین) cell/ml<100000(و متوسط) cell/ml<450000(و بالا ) cell/ml>1000000(در شش وت برای ساخت پنیر استفاده شود.به سه وت 2% آنزیم لیپاز افزوده شد در حالی که سه وت دیگر فاقد آنزیم لیپاز افزودنی بود.آزمایش به صورت طرح کاملاً تصادفی شامل 6 تیمار در 3 تکرار در سه زمان مشخص از دوره رسیدن انجام شد.اسیدهای چرب میریستیک، پالمیتیک و اولئیک عمده ترین اسیدهای چرب درمیان سایر اسیدهای چرب در تمام دوره های مشخص رسیدن بودند. اغلب اسیدهای چرب آزاد تا روز 35 از دوره رسیدن افزایش و بعد از روز 35 ام از دوره رسیدن کاهش نشان داد. ارزیابی حسی تیمارها از نظر عطر و طعم و بافت نشان داد که امتیاز حسی عطر و طعم و بافت کلیه تیمارها در طی دوره رسیدن 70 روزه کاهش یافت. بر طبق نتایج حاصله تیمار T1(شاهد) به عنوان تیمار برتر بالاترین مقبولیت حسی را داشت.
http://www.aejournal.ir/article_92122_e14987bedd02787549b79283a0f68a42.pdf
2019-04-21
331
342
شمارش سلول های سوماتیک
پنیر سفید آب نمکی
اسیدهای چرب آزاد
خصوصیات حسی
لیپولیز
مریم
سعیدی
saeedimaryam650@yahoo.com
1
گروه علوم و صنایع غذایی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
علیرضا
شهاب لواسانی
shahabam20@yahoo.com
2
مرکز تحقیقات فناوری های نوین تولید غذای سالم ، واحد ورامین-پیشوا ، دانشگاه آزاد اسلامی ، ورامین ، ایران
LEAD_AUTHOR
سارا
موحد
phd_movahed23@yahoo.com
3
گروه علوم و صنایع غذایی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
بی نام، 1378. اصول کلی ارزیابی شیر و فراورده های آن با روش نمره دهی مطابق با استاندارد ملی ایران شماره4691، موسسه استاندارد و تحقیقات ایران.
1
خالق خواه، ا.؛ عزت پناه، ح.؛ مشهدی اکبر بوجار، م.؛ گیویان راد، م.ه.؛ سیف هاشمی، س. و معتمد، ر.، 1392. تاثیر سطوح مختلف سلول های سوماتیک بر اسیدهای چرب اشباع شیر خام. مجله دانش و پژوهش علوم و دامی. شماره 12، صفحات 63 تا 79.
2
Akin, N.; Aydemir, S.; Kocak, C. and Yildiz, M.A., 2003. Changes of free fatty acid contents and sensory properties of white pickled cheese during ripening. Journal of Food Chemistry. Vol. 80, pp: 77-83.
3
Alizadeh, M.; Hamedi, M. and Khosroshahi, A., 2006. Modeling of proteolysis and lipolysis in Iranian white brine cheese. Journal of Food chemistry. Vol. 97, pp: 294-301.
4
Barlowska, J.; Grodzicki, T.; Topylu, B. and Wolanczuk, A., 2008. Production season influence on the fatty acids profile of milk of the different cow s breeds. Materially konferencyjne LXXΙΙΙZjazdu PTZ.
5
Chen, S.X.; Wang, J.Z.; Van kessel, J.S.; Ren, F.Z. and Zeng, S.S., 2010. Effect of somatic cell count in goat milk on yield, sensory quality and fatty acid profile of semi soft cheese. Journal of Dairy Science. Vol. 93, pp: 1345-1354.
6
Georgala, A.K.; Kandarakis, I.G.; Kaminarides, S.E. and Anifantakis, E.M., 1999. Volatile free fatty acid content of Feta and white brined cheeses. Aust. Journal of Dairy Technology. Vol. 54, pp: 5-8.
7
Jaeggi, J.J.; Govindasamy-Lucey, S.; Berger, Y.M.; Johnson, M.E.; Mckusick, B.C.; Thomas, D.L. and Wendorff, W.L., 2003. Hard Ewe s milk cheese manufactured from milk of three different groups of somatic cell counts. Journal of Dairy Science. Vol. 86, pp: 3082-3089.
8
Ha, J.K. and Lindsay, R.C., 1993. Release of volatile branched-chain and other fatty acids from ruminant milk fats by various lipases. Journal of Dairy Science. Vol. 76, pp: 677-690.
9
Kandarakis, I.; Moatsou, G.; Georgala, A.I.K.; Kaminarides, S. and Anifantakis, E., 2001. Effect of draining temperature on the biochemical characteristics of Feta cheese. Journal of Food Chemistry. Vol. 72, pp: 369-378.
10
Kondyli, E.; Katsiari, M.C.; Massouras, T. and Voutsinas, L.P., 2002. Free fatty acids and volatile compound of low- fat Feta- type cheese made with a commercial adjunct culture. Journal of Food Chemistry. Vol. 79, pp: 199-205.
11
Mazal, G.; Vianna, P.C.B.; Santos, M.V. and Gigante, M.L., 2007. Effect of somatic cell count on Prato cheese composition. Journal of Dairy Science. Vol. 90, pp: 630-636.
12
Molimard, P. and Spinnler, H.E., 1996. Review: Compounds involved in the flavor of surface mould-ripened cheeses: origins and properties. Journal of Dairy Science. Vol. 79, pp: 169-184.
13
Shahab Lavasani, A.R.; Ehsani, M.R.; Mirdamadi, S. and Mousavi, S.M., 2012. Study of proteolysis and lipolysis of probiotic Lighvan cheese. International Journal of Agriscience. Vol. 2, No. 4, pp: 341-352.
14
Shahab Lavasani, A.R., 2018. Biochemical Changes of Iranian Probiotic Lighvan Cheese. Czech Journal of Food Science. Vol. 36, pp: 1-7.
15
Yilmaz, G.; Ayar, A. and Akin, N., 2004. The effect of microbial lipase on the lipolysis during the ripening of Tulum cheese. Journal of Food Engineering. Vol. 22, pp: 205-207.
16
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی توانمندی تکنولوژیکی برای تدوین راهبردهای فناوری نوین با استفاده از مدل پاندا، هکس و مجلوف در هلدینگ صنایع غذایی سینا
تکنولوژی از دیرباز بهعنوان یکی از عناصر تولید و توسعه مطرح بوده و همواره با آن رشد دانش بشر در حال تغییر بوده است. پیشرفت تکنولوژی میزان کارآیی سایر عناصر درگیر فرایند تولید و توسعه را تا آنجا بالا است که امروزه تکنولوژی بهعنوان عامل استراتژیک برای توسعه اقتصادی کشورها و شرکتها مطرح است. با پیشرفت تکنولوژی ضرورت استفاده از تکنولوژیهای مدرن نیاز به ارزیابی تکنولوژی بیش از پیش احساس میشود چرا که برای تعیین اهداف میبایستی وضعیت موجود و شکاف بین سطح توانمندی موجود و مورد نیاز تعیین گردد. مقاله حاضر با هدفارزیابی توانمندی تکنولوژیکی به جهت تدوین راهبردهای فناوری نوین با استفاده از مدلهای پاندا، هکس و مجلوف در هلدینگ صنایع غذایی سینا انجام شده است، برای نیل به هدف هفت سوال مطرح شده است. تحقیق حاضر از نوع تحقیقات کاربردی و توصیفی بوده و جامعه آماری تحقیق شامل هلدینگ صنایع غذایی سینا که شامل 15 شرکت تولیدکننده مواد غذایی بوده است که با استفاده از انتخاب 48 نفر کارشناس، مهندس و مدیر بهعنوان نمونه آماری، دادههای مورد نیاز تحقیق را با استفاده از مصاحبه و شش پرسشنامه تخصصی جمعآوری و برای تجزیه و تحلیل دادهها از مدلهای پاندا، هکس و مجلوف استفاده شده است. براساس یافتههای تحقیق امتیاز توانمندیهای استراتژیک 79، 68% تیازتوانمندیهای تکنولوژیک تاکتیکی 83، 69% و امتیاز توانمندیهای تکنولوژیک مکمل 25، 73% بوده است و همچنین طبق مدل مجلوف استراتژیهای توسعه سیستم اطلاعات مدیریت، ارتقا زیرساختهای اصلی تولید، توسعه سیستم بازاریابی مناسب، تکمیل زنجیره تامین مواد اولیه، تنوع درتولید محصولات، ارتقا و بهبود فرایندهای تولید بهعنوان استراتژیهای افزایش توانمندی تکنولوژیکی بههمراه برنامهها و پروژههای پشتیبان فنی تدوین و ارائه گردیده است.
http://www.aejournal.ir/article_90200_4bc09761346065958655da1456ab3584.pdf
2019-04-21
343
352
تکنولوژی
مدل پاندا
مدل هکس و مجلوف
استراتژی های تکنولوژیکی
میرمحمد
حشمتی
amirehsanjon@gmail.com
1
گروه مدیریت صنعتی، واحد تبریز، دانشگاه آزاد اسلامی، تبریز، ایران
AUTHOR
کمال الدین
رحمانی
khmp21@yahoo.com
2
گروه مدیریت صنعتی، واحد تبریز، دانشگاه آزاد اسلامی، تبریز، ایران
LEAD_AUTHOR
ناصر
فقهی فرهمند
naser.feghhhi@gmail.com
3
گروه مدیریت صنعتی، واحد تبریز، دانشگاه آزاد اسلامی، تبریز، ایران
AUTHOR
اثباتی،ح.؛ کریمیان، ا.ه. و آقاپور، ح.، 1395. تدوین استراتژی تکنولوژی. آینده پژوه. چاپ دوم.
1
اعرابی، س.م. و منتی، ح.، 1389. استراتژی فناوری. نشر مهکامه.
2
اسلامی، ر.، 1389. عوامل موفقیت در انتقال فناوری و توسعه صنعتی کشورهای درحال توسعه. صنعت و توسعه. شماره ۱۷.
3
بزمی، م. و تاجریان، م.، 1392. ارزیابی فرایند انتقال فناوری DMD از دیدگاه مدیریت فناوری. دومین همایش ملی توسعه فناوری در صنعت نفت.
4
توکلی، ع.، 1392. ضوابط، مقررات و روشهای مناسب انتقال فناوری به کشور. پایاننامه کارشناسیارشد. دانشگاه علم و صنعت ایران.
5
ذوالفقارنسب، س.، 1383. تاریخچه ارزیابی علم و فناوری و ظهور شاخصهای علمی. هیئت نظات و ارزیابی فرهنگی و علمی.
6
طباطباییان، س.ح.ا.؛ باقری، س.ک.؛ گودرزی، م. و نوده، ع.، 1389. ارزیابی سیاستگذاری فناوری در صنعت نرمافزار هند. دومین کنفرانس مدیریت فناوری.
7
طارق، خ.، 1392. مدیریت فناوری رمز موفقیت در رقابت و خلق ثروت. ترجمه اعرابی، س.م. و ایزدی، د.، دفتر پژوهشهای فرهنگی.
8
علیاحمدی، ع. و توکلی، ع.، 1391. نگرش جامع به انتقال فناوری. ماهنامه تدبیر. شماره ۷۹، صفحه ۱۰۹.
9
فدویاصغری، ع.، 1397. انتقال فناوری. ماهنامه تدبیر. شماره 114.
10
قاضینوری، س.س.، 1389. ارزیابی فناوری، ابزارکمک به سیاستگذاری. انتشارات مرکز صنایع نوین، چاپ اول.
11
منطقی، م.، 1395. روشهای مختلف انتقال فناوری. اولین دوره مدیریت فناوری هوا فضای ایران. تهران.
12
Advanced Science and Technology Palicy Planning (ASTPP) Network. 1999. Improving Distributed Intelligence in Complex Innovation Systems. Fraunhofer Institute, Karlsruhe.
13
Anderson, J.E., 2013. Public Policymaking, 6th ed. Boston: Houghton Mifflin Company. 14 p.
14
Ansari, M.; Dehghan Nayeri, M.; Yousefi Zenouz, R., 2009. Technological Deep Assessment of Automotive Parts Manufacturers Case of Iranian Manufacturers. International Journal of Social and Human Sciences. Vol. 3, pp: 37-46.
15
APCTT. 1989. Atlas Technology: A Framework for Technology Planning. APCTT Publications. 327 p.
16
Bagheri, N.; Mousavi, M. and Nasiri, M., 2011. Wind energy status of Iran: Evaluating Iran’s technological capability in manufacturing wind turbines, Renewable and Sustainable Energy Reviews. 173 p.
17
Bryson, J.M., 2014. What to Do When Stakeholders Matter. Public Management Review. Vol. 6, No. 1, pp: 21-53.
18
Chiesa, V., 2011. R&D Strategy and Organizations: Managing Technical change in Dynamic Contexts. Imperical College Press, UK.
19
Minzberg, H., 1992. Patterns in strategy formation. Management Science. Vol. 24, No. 9, pp: 934-948.
20
Mohr, H., 2012. Technology Assessment in Theory and Practice. journal of Society for Philosophy and Technology. Vol. 4, pp: 22-25.
21
Panda, H. and Ramanathan, K., 1996. Technological Capability Assessments of a Firm in the Electricity Sector. Technovation. Vol. 16, No. 10, pp: 31-44.
22
Panda, H. and Ramanathan, K., 1997. Technological capability assessment as an input for strategic planning: case studies at Electricitd de France and Electricity Generating Authority of Thailand.
23