ORIGINAL_ARTICLE
بررسی وضعیت پراکنش خرس قهوهای (1758 Ursus arctos Linnaeus) در منطقه حفاظتشده سفیدکوه استان لرستان
خرس قهوهای بزرگترین گونه از راسته گوشتخواران کشور است که در محدوده وسیعی از رشتهکوه البرز و زاگرس پراکنش دارد. دامنه پراکنش آن در نیمه غربی کشور به استان لرستان نیز میرسد. منطقه حفاظتشده سفیدکوه با پوشش گیاهی، وسعتو شرایط اکولوژیکی مناسب خود زیستگاه مطلوبی را برای اینگونه ایجاد کرده است. در راستای شناسایی محدوده پراکنش و زیستگاه مطلوب اینگونه در منطقه مذکور نقاط حضور در فصول بهار و تابستان سال 1396 جمعآوری شدند. 14 متغیر زیستگاهی مؤثر در پراکنش گونه شناسایی شد. پس از اجرای تحلیل هم خطی 4 متغیر به دلیل شاخص تورم واریانس (VIF) بیش از 10 از مدل حذف و مدلسازی با استفاده از 10 متغیر زیستگاهی، 10000 نقطه تصادفی پسزمینه و 500 تکرار در نرمافزار مکسنت اجرا شد. اهمیت متغیرها در مدلسازی با استفاده از تحلیل جک نایف انجام گرفت. بهمنظور دستیابی به نقشه دودویی زیستگاه از حد آستانه (LPT=Lowest Presence Threshold) استفاده شد. نتایج حاصل از اعتبارسنجی مدل نشان داد که مدل در میانگین اجرا موفق بوده است (0/85= AUC) و متغیرهای زیستگاهی فاصله از سکونت گاههای انسانی، جادههای فرعی و ارتفاع بیش ترین تأثیر را بر روی پراکنش گونه داشتهاند. براساس یافتهها 65 درصد از منطقه سفیدکوه برای خرس قهوهای زیستگاه مطلوب است. با توجه به توزیع گونه در منطقه میتوان اینگونه را بهعنوان شاخص سلامت و یکگونه کلیدی منطقه سفیدکوه تلقی کرد که در راستای حفاظت ازاین گونه ارزشمند سایر گونهها نیز حفاظت شوند.
http://www.aejournal.ir/article_92708_33887f43a03373a3e550253ee66482cb.pdf
2019-07-23
1
10
خرس قهوهای
پراکنش
زیستگاه
لرستان
مدلسازی
پیمان
کرمی
peymankarami1988@gmail.com
1
گروه محیطزیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر ، ملایر، ایران
AUTHOR
کامران
شایسته
ka_shayesteh@yahoo.com
2
گروه محیطزیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر ، ملایر، ایران
LEAD_AUTHOR
مینا
اسماعیلی
minaesmaeili@gmail.com
3
گروه محیطزیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر ، ملایر، ایران
AUTHOR
اداره کل حفاظت محیط زیست استان لرستان. 1396. معاونت محیط طبیعی. امور مناطق، اطلاعات مناطق حفاظت شده استان لرستان.
1
بهرامی نژاد، م.؛ نظامی بلوچی، ب. و حقانی، ع.، 1395. لکههای زیستگاهی مناسب برای حفاظت از قوچ و میش اوریال (Ovis Orientalis) در منطقه حفاظت شده درمیان، استان خراسان جنوبی. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 8، شماره 4، صفحات 9 تا 16.
2
پیروزی، ف.، 1392. مطالعه حیات وحش منطقه گردشگری سفید کوه در استان لرستان. دومین همایش ملی گردشگری و طبیعت گردی ایران زمین، همدان. شرکت هم اندیشان سبز فردا. 8 صفحه.
3
حبیب پور، ک. و صفری، ر.، 1391. راهنمای جامع کاربرد SPSS در تحقیقات پیمایشی (تحلیل دادههای کمی). انتشارات متفکران، تهران. 561 صفحه.
4
زارعی، م.ا.؛ محمودی، م.؛ حسین زاده، م.ح.؛ بندعلی، م. و محمودی، ف.، 1396. بررسی فاکتورهای مؤثر بر آشیان بومشناختی فضایی و زمانی خرس قهوهای (Ursus arctos syriacus) در حاشیه جنوبی دامنه توزیع آن در استان فارس. محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 1، صفحات 39 تا 48.
5
شیخی ئیلانلو، ص.؛ معین الدین، م.؛ قلی پور، م.؛ شیخی، ع. و کراچی، ه.، 1396. ارزیابی زیستگاه کوکر شکم سیاه (Pterocles orientalis) با روش آنتروپی بیشینه در پناهگاه حیات وحش شیر احمد سبزوار. فصلنامه محیط زیست طبیعی، منابع طبیعی ایران. دوره 69، شماره 1، صفحات 231 تا 245.
6
عبیداوی.، ز.؛ رنگزن، ک.؛ میرزایی، ر. و کابلی زاده، م.ف.، 1395. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه خرس قهوهای (Ursus arctos) در منطقه حفاظتشده شیمبار، استان خوزستان. فصلنامه بومشناسی کاربردی. دوره 5، شماره 18، صفحات 61 تا 72.
7
عصری، ی. و مهرنیا، م.، 1381. معرفی فلور بخش مرکزی منطقه حفاظتشده سفیدکوه، مجله منابع طبیعی ایران. جلد 55، شماره 3، صفحات 363 تا 378.
8
عطایی،ف.؛کرمی،م. و کابلی، م.، 1390. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه تابستانه خرس قهوهای (Ursus arctos syriocus) در منطقه حفاظتشده البرز جنوبی. نشریه محیطزیست طبیعی. سال 65، شماره 23، صفحات 235 تا 245.
9
مختاری، س.؛ سلطانی فرد، ه. و یاوری، ا.ر.، 1388. خود سازماندهی در تالاب هورالعظیم/هورالهویزه با تأکید بر اکولوژی سیمای سرزمین. فصلنامه پژوهشهای جغرافیایی طبیعی. شماره 70، صفحات 93 تا 105.
10
مددی، ح.؛ مرادی، ح.؛ سفیانیان، ع. و سلمان ماهینی، ع.ر.، 1396. کاربرد مدل سازی صدای ترافیک در تعیین منطقه اثر بوم شناختی جاده ها در زیستگاه طبیعی استان لرستان. فصلنامه بوم شناسی کاربردی، سال6، شماره 2، صفحات 69 تا 81.
11
میرزایی، ر.؛ همامی، م.ر.؛ اسماعیل ساری، ع. و رضایی، ح.ر.، 1392. تعیین پراکنش سارگپه معمولی (Buteo buteo) و عوامل مؤثر بر آن در استان گلستان با استفاده از الگوریتم آنتروپی بیشینه. نخستین کنفرانس بینالمللی اکولوژی سیمای سرزمین، دانشگاه صنعتی اصفهان. 10 صفحه.
12
نظامی بلوچی، ب.، 1393. بررسی عادتهای غذایی فصلی خرس قهوهای سوری (Ursus arctos syriacus Linnaeus, 1758) در منطقه حفاظتشده البرز مرکزی. فصلنامه تاکسونومی و بیوسیستماتیک. سال 6، شماره 19، صفحات 27 تا 36.
13
نظامی، ب.؛ عطایی، ف.؛ حیدری، ح.ر.؛ علیزاده شعبانی، ا.؛ اسحاقی، ر. و نعیمایی، ر.، 1396. مناطق کلیدی حفاظت از خرس قهوهای ماده (Ursus arctos Linnaeus, 1758) در البرز مرکزی. فصلنامه علمی پژوهشی زیستشناسی جانوری تجربی. سال 6، شماره 3، صفحات 137 تا 141.
14
همامی، م.ر.؛ اسماعیلی، س. و سفیانیان، ع.، 1394. پیشبینی پراکنش یوزپلنگ آسیایی، پلنگ ایرانی و خرس قهوهای در پاسخ به متغیرهای محیطی در استان اصفهان. فصلنامه بومشناسی کاربردی. سال 4، شماره 13، صفحات 51 تا 63.
15
Swets, A., 1988. Measuring the accuracy of diagnostic systems. Science. Vol. 240, No. 4857, pp: 1285-1293.
16
Cao, Y.; DeWalt, R.E.; Robinson, J.L.; Tweddale, T.; Hinz, L. and Pessino, M., 2013. Using Maxent to model the historic distributions of stonefly species in Illinois streams: The effects of regularization and threshold selections. Journal of Ecological Modelling. Vol. 259, pp: 30-39.
17
Chatterjee, S. and Hadi, A., 2006. Regression analysis by example, edn. John Wiley and Sons.
18
Elith, J.; Graham, C.H.; Anderson, R.P.; Dudík, M.; Ferrier, S.; Guisan, A.; Hijmans, R.J.; Huettmann, F.; Leathwick, J.R.; Lehmann, A.; Li, J.; Lohmann, L.G.; Loiselle, B.A.; Manion, G.; Moritz, C.; Nakamura, M.; Nakazawa, Y.; Overton, J.M.; Peterson, A.T.; Phillips, S.J.; Richardson, K.; Scachetti-Pereira, R.; Schapire, R.E.; Sobero, N.J; Williams, S.; Wisz, M.S. and Zimmermann, N.E., 2006. Novel methods improve prediction of species’ distribution from occurrence data. Journal of Ecography. Vol. 29, pp: 129-151.
19
Franklin, J., 2010. Mapping Species Distributions: Spatial Inference and Prediction. Cambridge University Press; Cambridge, UK.
20
Guisan, A. and Zimmermann, N.E., 2000. Predictive habitat distribution models in ecology. Journalof Ecological Modelling. Vol. 135, pp: 147-186.
21
Jerina, K.; Debeljak, M.; Dzeroske, S., Kobler, A. and Adamic, M., 2003. Modeling the Brown bear population in Slovenia a tool in the conservation management of a threatened species. Journal of Ecological modelling. Vol. 170, pp: 453-469.
22
Johnson, C.J.; Boyce, M.S.; Case, R.L.; Cluff, H.D.; Gau, R.J.; Gunn, A. and Mulders, R., 2005. Cumulative effects of human developments on arctic wildlife. Journalof Wildlife Monographs. Vol. 160, No. 1, pp: 1-3.
23
Kanellopoulos, N.; Mertzanis, G.; Korakis, G. and Panagiotopoulou, M., 2006. Selective habitat uses by brown bear (Ursus arctos L.) in northern Pindos, Greece. Journal of Biological Research. Vol. 5, pp: 23-33.
24
Long, R.A.; Donovan, T.M.; MacKay, P., Zielinski, W.J. and Buzas, J.S., 2010. Predicting Carnivore occurrence with noninvasive surveys and occupancy modeling. Journal of Landscape ecology. Vol. 26, pp: 327-340.
25
María C, M.S.; Cushman, S.A. and Saura, S., 2013. Scale dependence in habitat selection: the case of the endangered brown bear (Ursus arctos) in the Cantabrian Range (NW Spain), International Journal of Geographical Information Science. Vol. 28, No. 8, pp: 1531-1546.
26
Martin, J.; Basille, M.; Van Moorter, B.; Kindberg, J.; Allainé, D. and Swenson, J.E., 2010. Coping with human disturbance: Spatial and temporal tactics of the brown bear (ursus arctors). Canadian Journal of Zoology. Vol. 88, pp: 875-883.
27
Mertzanis, G.; Kallimanis, A.; Kanellopoulos, N., Sgardelis, S.; Tragos, A. and Aravidis, I., 2008. Brown bear (Ursus arctos L.) habitat use patterns in two regions of northern Pindos, Greece-management implications. Journalof Natural History. Vol. 42, No. 5, pp: 301-315.
28
Nawaz, M.A.; Martin, J. and Swenson, J.E., 2014. Identifying key habitats to conserve the threatened brown bear in The Himalaya. Journal of Biological Conservation. Vol. 170, pp: 198-206.
29
Pandey, R. and Papeş, M., 2018. Changes in future potential distributions of apex predator and mesopredator mammals in North America. Journal of Regional Environmental Change. Vol. 18, No. 4, pp: 1223-1233.
30
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Journal of Ecological Modelling. Vol. 190, pp: 231-259.
31
Posillico, M.; Meriggi, A.; Pagnin, E.; Lovari, S. and Russo, L., 2004. A habitat model for brown bear conservation and land use planning in the central Apennines. Journal of Biological Conservation. Vol. 118, No. 2, pp: 141-150.
32
Radosavljevic, A. and Anderson, R.P., 2014. Making better Maxent models of species distributions: complexity, overfitting and evaluation. Journal of Biogeogr. Vol. 41, pp: 629-643. Doi:10.1111/jbi.12227.
33
Rhoden, C.M.; Peterman, W.E. and Taylor, C.A., 2017. Maxent-directed field surveys identify new populations of narrowly endemic habitat specialists. Journal of Peer J 5:e3632 ttps://doi.org/10.7717/peerj. 3632.
34
Robin, K.; Trisalyn, N.; Gordon, S. and Chris, D., 2016. A movement-driven approach to quantifying grizzly bear (Ursus arctos) near-road movement patterns in west-central Alberta, Canada, Journal of Biological Conservation. Vol. 195, pp: 24-32.
35
Sergio, F.; Caro, T.; Brown, D.; Clucas, B.; Hunter, J.; Ketchum, J.; McHugh, K. and Hiraldo, F., 2008. Top predators as conservation tools: ecological rationale, assumptions, and efficacy. Annual Review of Ecology, Journal of Evolution and Systematics. Vol. 39, pp: 1-19.
36
Servheen, C.; Herrero, S. and Peyton, B., 1999. Bears. Status Survey and Conservation Action Plan. IUCN/SSC Bear and Polar Bear Specialist Groups, Gland, Switzerland.
37
Ziółkowska, E.; Ostapowicz, K.; Radeloff, V.C.; Kuemmerle, T.; Sergiel, A.; Zwijacz-Kozica, T.; Zięba, F.; Śmietana, W. and Selva, N., 2016. Assessing differences in connectivity based on habitat versus movement models for brown bears in the Carpathians. J of Landscape Ecology. Vol. 31, No. 8, pp: 1863-1882.
38
ORIGINAL_ARTICLE
مطلوبیت زیستگاه پلنگ (Panthera pardus saxicolor) با استفاده از روش حداکثر آنتروپی در پارک ملی و ذخیره گاه زیست کره گلستان
در عصر حاضر تخریب و جدایی زیستگاه اثرات بومشناسی قابلتوجهی بر روی گونههای حیات وحش بهخصوص گونههای شاخص و در معرض تهدید بهجا گذاشته است. در این میان گونه پلنگ توسط اتحادیه بینالمللی حفاظت از طبیعت و منابع طبیعی (IUCN) در رده حفاظتی، در معرض خطر انقراض (EN) قرارگرفته است. پارک ملی گلستان بهعنوان اولین پارک ملی ایران، توسط جاده میانگذر گرگان-بجنورد، عملاً به دونیمه شمالی و جنوبی تقسیم گردیده است که موجب تأثیرات شدیدی بر روی مطلوبیت زیستگاه گوشتخواران بهویژه پلنگ شده است. لذا شناخت عوامل مؤثر بر مطلوبیت زیستگاه پلنگ بهعنوان یک ابزار مفید در مدیریت و حفاظت از زیستگاههای باقیمانده در پارک ملی گلستان، میتواند مدیران حفاظت را در مدیریت مؤثر اینگونه یاری رساند. در این پژوهش جهت مدلسازی مطلوبیت زیستگاه پلنگ، از روش رویکرد آنتروپی بیشینه و با استفاده از 15 متغیر زیستگاهی و 77 نقطه حضور گونه استفاده شده است. درنهایت پس از استفاده از مدل مکسنت پتانسیل مطلوبیت زیستگاه پلنگ ایرانی در پارک ملی گلستان پیشبینی شد. شاخص AUC بهدستآمده برابر با 0/9 بوده است که عدد بهدست آمده بیانگر قدرت پیشبینی عالی مدل میباشد. نتایج براساس آزمون جک نایف نشان می دهد که پراکنش پلنگ در پارک ملی گلستان در درجه اول متأثر از پراکنش طعمهها شامل کل و بز، تشی، قوچ و میش و مرال بوده و سپس به متغیرهای محیطی دیگر شامل ارتفاع 500 تا 1000 متر، فاصله از منابع آبی و جاده وابسته است.
http://www.aejournal.ir/article_92448_648e91a285cfa4ccfd70ca379ce5d18f.pdf
2019-07-26
11
20
پلنگ
مطلوبیت زیستگاه
مکسنت
پارک ملی گلستان
میثم
مددی
maysam.mm65@chmail.ir
1
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
حسین
وارسته مرادی
varasteh@gau.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
احمدی، ا. و شمس اسفندآباد، ب.، 1394. ارزیابی مطلوبیت زیستگاه های تابستانه و زمستانه گوسفند وحشی البرز مرکزی (O.o.arkali & O.o.vigneu) به روش حداکثر بینظمی در استان تهران. علوم محیطی. دوره 13، شماره 3، صفحات 79 تا 88.
1
امیدی،م.؛کابلی،م.؛کرمی،م.؛سلمان ماهینی،ع. وحسنزادهکیابی،ب.،.1389 مدلسازی مطلوبیت زیستگاه پلنگ ایرانی(Panthera pardus saxicolor) به روش تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی(ENFA) در پارک ملی کلاه قاضی، استان اصفهان. علوم و تکنولوژی محیط زیست. سال 12، شماره 1.
2
ترنیان، ف.؛ آذرنیوند، ح.؛ یزدانپرست، ر.؛ زارع چاهوکی، م.ع.؛جعفری، م. و کومار، س.، 1396. تعیین مهمترین عوامل مؤثر بر پراکنش گونه Daphne mucronata Royle و مدلسازی رویشگاههای پتانسیل آن. نشریۀ مرتع، سال 11، شماره 2، صفحات 179 تا 193.
3
درویشصفت،ع.،1385. اطلس مناطق حفاظت شده. انتشارات دانشگاه تهران. 159 صفحه.
4
زمان پیرا،ش.، 1395. ارزیابی زیستگاه پازن در پارک ملی خجیر و سرخهحصار با استفاده از روش ENFA، پایاننامه کارشناسی ارشد، رشته محیط زیست، دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان.
5
شجاعی، ا.؛ قلی پور، م.؛ رضایی، ح. و یارمحمدی، ث.، 1396. ارزیابی مطلوبیت زیستگاه پلنگ ایرانی با روش آنتروپی بیشینه (Maxent). محیط زیست جانوری، سال 9، شماره 1.
6
شیخی ئیلانلو، ص.؛ معینالدینی، م.؛ قلی پور. م. و کراچی، ه.، 1395. ارزیابی زیستگاه کوکر شکم سیاه با روش آنتروپی بیشینه در پناهگاه حیاتوحش شیر احمد سبزوار. منابع طبیعی ایران. دوره96، شماره 1، صفحات 143 تا 191.
7
عبداللهی،ص. وسلمان ماهینی،ع.،1394. بررسی تأثیر مقیاس بر مدلسازی زیستگاه پلنگ در پارک گلستان. پژوهش های محیط زیست. سال 6، شماره 11، صفحات 173 تا 180.
8
عرفانیان، ب.؛ میرکریمی، س. ح.؛ ماهینی، ع. و رضایی، ح.، 1394. مکانیابی احداث گذرگاه برای پلنگ(Panthera pardus) در پارک ملی گلستان. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 7، شماره 4.
9
کربز،چ.ج.، 1391. بوم شناسی. مطالعه تجربی توزیع و فراوانی، مترجم: وهابزاده، ع.، چاپ دوم، انتشارات جهاد دانشگاهی. مشهد. صفحات 264 تا 269.
10
مجنونیان، ه.؛ زاهد، ب.؛ کیایی، ب.؛ فرهنگ دره شوری، ب. و گشتاسب میگونی، ح.، 1378. پارک ملی گلستان (ذخیره گاه زیستکره). سازمان حفاظت محیط زیست. تهران.
11
Acevedo, P.; Alzaga, V.; Cassinello, J. and Gortazar, C., 2007. Habitat suitability modeling reveals a strong niche overlap between two poorly known species, the broom hare and the Pyrenean grey partridge, in the north of Spanish. Acta Oecologica. Vol. 31, pp: 174-184.
12
Elith, J.; Graham, C.H.; Anderson, R.P.; Dudik, M.; Guisan, A.R.J.; Hijmans, F.; Huettmann, J.R.;Leathwick, A.L.J.; Lehmann, L.G.; Lohmann, B.A.; Loiselle, G.; Manion; M.C.; Nakamura, M.; Nakazawa, Y.; Overton, J.M.; Peterson, T.A.; Philips, J. S.; Richardson, K.; Philips, J.S.; Scachetti, R.; Philips, J.S.; Chapire, R.E.; Soberon, J.; Williams, S.; Wisz, M.S. and Zimmermann, N.E., 2006. Novel methods improve prediction of species distributions from occurrence data. Ecography. Vol. 29, No.2, pp: 129-151.
13
Erfanian, B.; Mirkarimi, S.H.; Mahini, A.S. andRezaei, H.R., 2013. A presence-only habitat suitability model for Persian leopard (Panthera pardus saxicolor) in Golestan National Park, Iran. Wildlife Biology. Vol. 19, No. 2, pp: 170-178.
14
IUCN. 2010. IUCN Red List of Threatened Species, Viewed 5 September 2009.www.redlist.org.
15
Lumetsberger, T., 2014. Diet of the Persian leopard (Panthera pardus saxicolor) in Golestan National Park, Iran; using scat analysis and biomass regression models. Master thesis, Master of International Nature Conservation, Georg-August-Universität Göttingen, Germany and Lincoln University.
16
Maharjan, B.; Shahn, A.; Thapa, T. and Shrestha, P.M., 2017. Geo-spatial Analysis of Habitat Suitability for Common Leopard (Panthera pardus Linnaeus, 1758) in Shivapuri Nagarjun National Park, Nepal. Environment and Ecology Research. Vol. 5, No. 2, pp: 117-128.
17
Philips, J.S.; Dudik, M.,and Schapire, E., 2004. A maximum entropy approach to species distribution modeling. Proceedings of the Twenty-First International Conference of Machin Learning, Banff, Alberta, Canada. pp: 55-662.
18
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological modeling. Vol. 190, No. 3, pp: 231-259.
19
ORIGINAL_ARTICLE
مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش (Ovis orientalis) و ارتباط آن با پراکنش پوشش گیاهی در فصل پاییز در منطقه شکار ممنوع کاوه ده
منطقه کاوه ده در شهرستان فیروزکوه از توابع استان تهران می باشد. این مطالعه بررسی مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش و ارتباط آن با پراکنش پوشش گیاهی در این منطقه است. در فصل پاییز1393 با انجام پلات گذاری برای شناسایی گونه های گیاهی و با استفاده از نرم افزار Past برای تعیین شاخص های تنوع زیستی، گیاهان مورد بررسی قرار گرفت. مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش با استفاده از رتبه دهی به متغیرهای زیستگاهی (روشHEP) و مدل HSIتعیین شد. متغیرها شامل: پوشش گیاهی، جهت، شیب، فاصله از جاده، فاصله از سکونت گاهها و فاصله از زمینهای کشاورزی بود. نتایج نشان داد در مهرماه، 11گونه گیاهی، آبان ماه 9 گونه گیاهی و آذرماه نیز 9 گونه گیاهی شناسایی شد. شاخص تنوع شانون وینر در سه ماه در فصل پائیز به ترتیب 2/013، 882 ،1/2، غنای گونه ای مارگالف به ترتیب 2/153، 1/954، 2/288، غنای گونه ای منهینک به ترتیب 1/079، 1/162، 1/576 و تنوع گونهای سیمپسون 0/8232، 0/8411، 8154 /0 به دست آمد. با توجه به امتیازات به دست آمده از روش HEP، مطلوبیت زیستگاه منطقه کاوه ده در فصل پاییز 0/67 تعیین شد که نشان دهنده مطلوبیت زیستگاه خوب در این منطقه می باشد. طبق نتایج به دست آمده هیچ اختلاف معنی داری بین ماه های مختلف در فصل پاییز وجود نداشت. 9 متغیر بررسی شده بین سه ماه مهر و آبان و آذر اختلاف معنی داری را نشان ندادند.
http://www.aejournal.ir/article_92714_2972707c0c4c0c0ea75a1dd3580d77fa.pdf
2019-07-23
21
26
مدل HSI
روشHEP
مطلوبیت زیستگاه
قوچ و میش Ovis orientalis))
پوشش گیاهی
منطقه شکار ممنوع
محیا
خسروی
mahyakhosravi@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، واحد خوراسگان، دانشگاه آزاد اسلامی، اصفهان، ایران
AUTHOR
بهروز
بهروزی راد
behrouzirad@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
احمدپور، م.؛ وارسته مرادی، ح.؛ اکبری، ح. و ایمانی هرسینی، ج.، 1394. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش اوریال در پناهگاه حیات وحش دره انجیر استان یزد. محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 4، صفحات 13 تا 28.
1
اداره محیط زیست فیروزکوه. 1384. طرح جامع منطقه شکار ممنوع کاوه ده فیروزکوه. صفحات 9 تا 31.
2
پهلوانی، ع.، 1383. ارزیابی زیستگاه قوچ و میش اوریال پارک ملی گلستان. محیط شناسی. دوره 30، شماره 3، صفحات 1 تا 8.
3
جاویدان، ر.؛ نوری، ا. و علیزاده شعبانی، ا.، ۱۳۹۶، مروری بر روشهای ارزیابی زیستگاه، چهارمین کنفرانس بینالمللی برنامه ریزی و مدیریت محیط زیست، دانشگاه تهران.
4
حسنی، ش. و مهرورزمغانلو، ک.، ۱۳۹۶. اثرات قرق بر میزان تولید علوفه و پوشش تاجی گیاهان مرتعی در ارسباران. اولین همایش ملی صیانت و حفاظت از جنگل های ارسباران، تبریز، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی آذربایجان شرقی
5
خاکی صحنه، س.؛ علیزاده شعبانی، ا.؛ میرسنجری، م.؛ کابلی، م.؛ نوری، ز.و فتاحی، ب.، 1390. ارزیابی زیستگاه پایکای افغانی با استفاده از روش های رگرسیون منطقی دوتایی و HEP (مطالعه موردی: منطقه حفاظت شده لشگردر، همدان). محیط زیست جانوری. شماره 1، صفحات 3 تا 10.
6
خسروی، م.وبهروزی راد، ب.،1393. بررسی پوشش گیاهی منطقه کاوه ده فیروزکوه محدوده تنگه آخوری. دومین همایش ملی برنامه ریزی حفاظت، حمایت از محیط زیست و توسعه پایدار.
7
خسروی،م. و بهروزی راد، ب.،1394.تعیین مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش در منطقه کاوه ده فیروزکوه. چهارمین همایش سراسری محیط زیست، انرژی و پدافند زیستی.
8
رازقندی، ع. و کلاته، ع.، ۱۳۹۶. مدیریت زیستگاه های حیات وحش و مناطق حفاظت شده با استفاده از رویکرد اکولوژی سیمای سرزمین. چهارمین کنفرانس بین المللی برنامه ریزی و مدیریت محیط زیست، تهران، دانشکده محیط زیست دانشگاه تهران.
9
رهبری لادمخی، پ. و رضایی کلج، س.، ۱۳۹۳. ارزیابی زیستگاه قرقاول معمولی در زیستگاه سنگجوب صومعه سرا (گیلان) با استفاده از روش HEP. اولین کنفرانس بین المللی مهندسی محیط زیست، تهران، مرکز راهکارهای دستیابی به توسعه پایدار.
10
سلمان ماهینی، ع.، 1373. ارزیابی زیستگاه قوچ و میش در اندوختگاه زیست سپهر توران با تاکید بر کاربرد عکس های ماهواره ای. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه تهران. تهران.
11
صفری ارمی، م.؛ حجتی، م. و فلاح، ا.، ۱۳۹۶. تاثیر شرایط مختلف رویشگاهی بر خصوصیات رویشی در توده های ون سری برنجستانک مازندران. هفتمین همایش سراسری کشاورزی و منابع طبیعی پایدار، تهران، مرکز راهکارهای دستیابی به توسعه پایدار. موسسه آموزش عالی مهر اروند.
12
ضیایی، ه.، 1388. راهنمای صحرایی پستانداران ایران. کانون آشنایی با حیات وحش. تهران. 419 صفحه.
13
عفتی، ن.؛ منصوری، ج.؛ دهداردرگاهی،م. وشمس اسفندآباد،ب.، 1392. ارزیابی زیستگاه بهاره قوچ و میش اوریال (Ovis orientalis arkali) در پارک ملی سالوک به روش انفا. همایش ملی پژوهش های محیط زیست ایران. 9 صفحه.
14
علیزاده احمدآباد، ز.؛ نادری، س.؛ سعادت علی قیالو، ن. و اسماعیلی، ح.ر.، ۱۳۹۴. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه پاییزه قوچ و میش در پارک ملی بمو براساس روش حداکثر آنتروپی. دومین همایش ملی تغییرات اقلیم و مهندسی توسعه پایدار کشاورزی و منابع طبیعی، تهران، گروه پژوهشی بوعلی
15
فلاح باقری،ف.؛کابلی،م.وآزیتا،ف.،1388. ارزیابی زیستگاه قوچ و میش اصفهانی(Ovis orientalis isphahanica) در پارک ملی کلاه قاضی با روشENFA . همایش و نمایشگاه ژئوماتریک.
16
کرمی، م.؛ قدیریان، ط. و فیض الهی، ک.، 1391. اطلس پستانداران ایران. چاپ اول. سازمان حفاطت محیط زیست.
17
گلزار، ا.؛ جومردیانی، ب. وپورشیرزاد، ع.، 1391. ارزیابی زیستگاه بز و پازن Capra aegagrus aegagrus در منطقه حفاظت شده تنگ سولک به کمک روش HEP. اولین همایش ملی حفاظت و برنامه ریزی محیط زیست.
18
ملکی نجف آبادی، س.؛ همامی، م.و سلمان ماهینی، ع.، 1389. تعیین مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش اصفهانی در پناهگاه حیات وحش موته با استفاده از روش تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی. محیط زیست طبیعی. دوره 63، صفحات 279 تا 290.
19
Ahas, R.; Aasa, A.; Menzel, A.; Fedotova, V. and Scheifinger, H., 2002. Changes in European spring phenology. International journal of climatology. Vol. 22, No. 14, pp: 1727-1738.
20
Brooks, R.P., 1997. Improving habitat suitability index models. Wildlife Society Bulletin. Vol. 25, No. 1, pp: 163-167.
21
Dayton, G.H. and Fitzgerald, L.A., 2006. Habitat suitability models for desert amphibians. Biological Conservation. Vol. 132, No. 1, pp: 40-49.
22
Del Barrio, G.B.; Alvera, J.; Puigdefabregas, A. and Diez, C., 1997. Response of high mountain landscape to topographic variables: Central Pyrenees. Landscape Ecology. Vol. 12, No. 2, pp: 95-115.
23
Dengler, J.; Löbel, S. and Dolnik, C., 2009. Species constancy depends on plot size, a problem for vegetation classification and how it can be solved. Journal of Vegetation Science. Vol. 20, No. 4, pp: 754-766.
24
Guisan, A. and Zimmermann, N.E., 2000. Predictive habitat distribution models in ecology. Ecological modelling. Vol. 135, No. 2, pp: 147-186.
25
Khalili, F.; Malekian1, M.; Rojae, N. and Hemami, M.R., 2017. Habitat Evaluation of Persian Squirrel (Sqiurus anumalus) in Servak Forested Area in Kohgiluyeh & Boyer Ahmad Province. Iranian Journal of Applied Ecology. Vol. 5, No. 18, pp: 15-25.
26
Khan, G.; Khan, B.; Qamer, F.M.; Abbas, S.; Khan, A. and Xi, C., 2016. Himalayan ibex (Capra ibex sibirica) habitat suitability and range resource dynamics in the Central Karakorum National Park, Pakistan. Journal of King Saud University Science. Vol. 28, No. 3, pp: 245-254.
27
Santos, B.; Barbosa, D. and Tabarelli, M., 2007. Directional changes in plant assemblages along an altitudinal gradient in northeast Brazil. Brazilian Journal of Biology. Vol. 67, No. 4, pp: 777-779.
28
Willis, A., 1973. Introduction to plant ecology: a guide for beginners in the study of plant communities.
29
ORIGINAL_ARTICLE
تلفیق مدل مدار الکتریکی و حداکثر آنتروپی برای طرحریزی کریدورهای حفاظتی بین استانهای اصفهان و مرکزی
آگاهی از مسیر حرکت گونهها در میان زیستگاههای مختلف امری ضروری جهت توسعه رویکردهای حفاظتی در مقیاس سیمای سرزمین است. حفظ توانایی حرکت و جابهجایی افراد در دورههای کوتاه تا میانمدت امکان انتشار، دسترسی به زیستگاههای مطلوب، مهاجرتهای فصلی و پویایی ابرجمعیتها و در بلندمدت، امکان تغییر محدودههای پراکنش گونهها در واکنش به تغییر اقلیم را فراهم مینماید. هدف از این مطالعه شناسایی کریدورهای مهاجرتی قوچ و میش اصفهانی Ovis orientalis isphahanica در بین منطقه حفاظتشده هفتادقله در استان مرکزی و پناهگاه حیاتوحش موته در استان اصفهان با رویکرد تلفیقی مدل مدار الکتریکی با استفاده از نرم افزار Circuitscape و مدل حداکثر آنتروپی با استفاده از نرم افزار MaxEnt است. در مرحله اول، مدل سازی پراکنش گونه طی دو گام با استفاده از دادههای حضور و بدون استفاده از دادههای حضور درناحیه حدفاصل مورد مطالعه مابین مناطق تحت حفاظت مذکور انجام گرفت. خروجیهای مدل حداکثر آنتروپی جهت شناسایی مسیرهای ارتباطی وارد مدل مدار الکتریکی گردید. نتایج مدلها نشان داد تنها یک مسیر اصلی بالقوه مطلوب برای جابهجایی بین مناطق تحت حفاظت موته وهفتادقله وجود دارد که در نزدیکی منطقه هفتادقله به چند شاخه تقسیم شده و درنتیجه، مسیرهای متعدد بالقوه مطلوبی را درآن ناحیه به وجود میآورند. مسیرهای مطلوب شناسایی شده توسط مدلها باراههای گدار شناخته شدهای که در طی سالیان گذشته توسط جمعیتهای این گونه استفاده شده است مطابقت دارد و پیشنهاد میشود این کریدورها به شبکه مناطق تحت حفاظت، افزوده شود.
http://www.aejournal.ir/article_92156_2f5c2a1422a1a5cc6f62de6c8e3a1274.pdf
2019-07-23
27
36
کریدور
مهاجرت
گردنه بطری
مقاومت سیمای سرزمین
مدار الکتریکی
آزیتا
رضوانی
azita.rezvani70328@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
سیما
فاخران
fakheran@cc.iut.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
LEAD_AUTHOR
علیرضا
سفیانیان
soffianian@cc.iut.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
مصطفی
ترکش اصفهانی
m_tarkesh@cc.iut.ac.ir
4
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
محمود رضا
همامی
mrhemami@cc.iut.ac.ir
5
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
خسروی، ر.، 1394. تاثیرناهمگونی زیستگاه برساختارژنی و اکولوژی جمعیت های آهوی گواتردار (Gazella subgutturosa) در مناطق مرکزی کشور با رویکرد سیما- ژنتیک. رساله دکتری. دانشگاه صنعتی اصفهان. دانشکده منابع طبیعی.
1
ضیایی،ه.، 1387. راهنمای صحرایی پستانداران ایران. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست.
2
علی نیا، ا. و سامانی، م. و افخمی، م. و بیرانوند، م.، 1389. بررسی تنوع زیستی استان اصفهان. همایش ملی تنوع زیستی و تأثیر آن برکشاورزی و محیط زیست.
3
محمدی، ع.؛ و کابلی، م.؛ اشرفی، س.؛ یوسفی، م. و مفیدی نیستانک، م.، 1392. تعیین اندازه گستره خانگی کمرکولی بزرگ sittatephonota و کمرکولی کوچکS. neumayerدر ناحیه تماس آن ها در ایران. همایش ملی برنامه ریزی حفاظت، حمایت از محیط زیست و توسعه پایدار.
4
مروتی، م.؛ کرمی، م.؛ کابلی، م.؛ روستا، ز. و شرکائی، م.، 1393. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش Ovis oreintalis مهمترین طعمه یوزپلنگ آسیاییAcinonyx jubatus venaticus با استفاده از حداکثر آنتروپی در پناهگاه حیات وحش دره انجیر در استان یزد. محیط زیست جانوری. صفحات 135 تا 149.
5
مشهدی احمدی،ا.؛شمس اسفندآباد،ب.وگشتاسبمیگونی، ح.، 1393. مدل سازی مسیرهای گدار گوسفند وحشی البرز مرکزی با استفاده از آنالیز کم ترین هزینه مسیر در استان تهران (O.o.arkali & O.o.vigneii). علوم و مهندسی محیط زیست. 41 صفحه.
6
مکی،ت.،1390. ارزیابی اثرات اکولوژیکی کنارگذر غرب اصفهان بر پناهگاه حیاتوحش قمیشلو. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده منابع طبیعی. دانشگاه صنعتی اصفهان.
7
ملکوتی خواه، ش.؛ فاخران، س. و سفیانیان، ع.، 1392. استفاده از تئوری مدارهای الکتریکی جهت شناسایی کریدورهای مهاجرتی بین پناهگاههای حیاتوحش موته و قمشلو در استان اصفهان. بوم شناسی کاربردی. 77 صفحه.
8
ملکی نجف آبادی، س.؛ همامی، م. و ماهینی، ع.، 1389. تعیین مطلوبیت زیستگاه قوچ ومیش اصفهانی در پناهگاه حیات وحش موته با استفاده از روش تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی. نشریه محیط زیست طبیعی. مجله منابع طبیعی ایران. صفحات 279 تا 290.
9
Bashari, H. and Hemami, MR., 2013. Apredictive diagnostic model for wild sheep (ovis orientalis) habitat suitability in iran. J of Natural Conservation. pp: 319-325.
10
Beier, P.; Garding, E. and Majka, DR., 2008. Arizona missing linkages Gila Bend - Sierra Estrella Linkage Design. Report to Arizona Game and Fish Department. School of Forestry, Northern Arizona University.
11
Bertiller, M.B.; Elissalde, N.O.; Rostagno, C.M and Defosse, G.E., 1995. Environmental patterns and plant distribution along a precipitation grardient in western Patagonia. Journal of Arid Environments. pp: 85-97.
12
Bolger, DT.; Newmark, WD.; Morrison, TA. and Doak, DF., 2008. The need for integrative approaches to understand and conserve migratory ungulates. Ecol Lett. Vol. 11, pp: 63-77.
13
Cushman, S.; McKelvey, K. and Schwartz, M., 2009. Use of Empirically De ived Source-DestinationModels toMap Regional Conservation Corridors. Conservation Biology. pp: 368-376.
14
Cushman, SA.; McRae, BH.; Adriaensen, F.; Beier. P.; Shirley, M. and Zeller, K., 2013. Biological corridors and connectivity. Key Topics in Conservation Biology. pp: 384-404.
15
Dickson, B.; Roemer, G.; McRae, B. and Rundall, J., 2013. Models of Regional Habitat Quality and Conectivity for Pumas (Puma concoloor) in the Southwestern United. PLOS. Vol. 8.
16
Farhadinia, M.; Ahmadi, M.; Sharbafi, E.; Khosravi, S.; Alinezhad, H. and Macdonald, D., 2015. Leveraging trans-boundary conservation partnershio: Persistence of Persian leopard (Panthera pardus saxicolor) in the Iranian Caucasus. Biological Conservation. pp: 770-778.
17
Fryxell, J.M., 1991. Forage quality and aggregation by large herbivores. American Naturalist. pp: 478-498.
18
Goljani, R.; Kaboli, M.; Karami, M.; Ghodsizadeh, Z. and Nourani, E., 2012. Male Alborz Red Sheep (Ovis gmelini × O. vignei) Migration Corridors Selection from Summer to Fall Habitats in Jajroud Protected Area Complex Iran. Russian Journal of Ecology. pp: 67-76.
19
Hanski, I.; 1998. Connecting the parameters of local extinctionand metapopulation dynamics. Oikos. pp: 390-396.
20
Hijmans, RJ.; Cameron SE, Parra JL; Jones, PG. and Jarvis, A., 2005. Very high resolution interpolated climate surfaces for global land areas. Int J Climatol. Vol. 25. pp: 1965-1978.
21
Khosravi, R.; Hemami, M.; Malekian, M.; Flint, A. and Flint, L., 2015. Maxent modelling for predicting distribution of goitered gazelle in central Iran: the effect of extent and grain size on performance of the model. Turkish Journal of Zoology. pp: 574-585.
22
Li, G.; Xu, G.; Guo, K. and Du, Sh. 2014. Mapping the global potential geographical distribution of black locust using herbarium data and a maximum entropy model. Forest. pp: 2773-2792.
23
McClure, M.L.; Hansen, A.J. and Inman, R.M., 2016. Connecting models to movements: testing connectivity model predictions against empirical migration and dispersal data. Landscape Ecology. pp: 1419-1432.
24
McRae, B.H.; Dickson, B.G.; Keitt, T.H. and Shah, V.B., 2008. Using circuit theory to model connectivity in ecology evolution & conservation. Ecology. pp: 2712-2724.
25
McRae, B.H. and Shah, V.B., 2011. Circuitscape User Guide. The University of California, Santa Barbara.
26
Minor,E.andUrban,D.,2008. A graph theory framework for evaluating landscape connectivity and conservation planning. Conservation Biology. pp: 297-307.
27
Moilanen, A.; Leathwick, J.R. and Quinn, J.M., 2011. spatial prioritization of conservation management. Conserv Lett. pp: 393-383.
28
Pearson, R.G. and Dawson, T.P., 2003, Predicting the impacts of climate change on thedistribution of species: are bioclimate envelope models useful? Global ecology and Biogeography. pp: 361-371.
29
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum Entropy modeling of species geographic distributions. Ecological Modeling. pp: 231-259.
30
Pinto, N. and Keitt, T.H., 2009. Beyond the least-cost path: evaluating corridor redundancy using a graph-theoretic approach. Landscape Ecol. pp: 253-266.
31
Poor, E.; Loucks, C.; Jakes, A. and Urban, D., 2012. Comparing Habitat Suitability & Connectivity Modeling Method for Conserving Pronghorn Migratins. PLOS.
32
Roever, C.L.; Aarde, R.J.V. and Leggett, K., 2013. Functional connectivity within conservation networks: delineating corridors for African elephant. Biological Conservation. pp: 128-135.
33
Shams Esfandabad, B.; Karami, M.; Hemami, M.; Riazi, B. and Sadough, M., 2010. Habitat associations of wild goat in central Iran: implications for conservation. European Journal of Wildlife Research.
34
WWW.IUCN.org
35
ORIGINAL_ARTICLE
ارتباط بین شاخص دما-رطوبت نسبی و رکوردهای روزآزمون تولید شیر و درصد چربی شیر گاوهای هلشتاین اقلیم مدیترانهای ایران
هدف از این تحقیق مطالعه اثر شاخص دما-رطوبت (THI) به عنوان یک توصیف گر محیطی برای استرس گرمایی بر تولید شیر و درصد چربی گاوهای هلشتاین در اقلیم مدیترانه ای ایران بود. اطلاعات تولیدی شکم اول جمعآوری شده طی سالهای 1380 تا 1395 مربوط به 42751 و 38829 رأس گاو شیری با 348868 و 302851 رکورد به ترتیب برای تولید شیر و درصد چربی شیر مورد استفاده قرار گرفت. میانگین روزانه THI برای سه روز قبل از رکوردگیری که از اطلاعات نزدیک ترین ایستگاه های هواشناسی به گله ها محاسبه شده بود به عنوان یک اثر محیطی درنظر گرفته شد. مؤلفه های (کو) واریانس با استفاده از روش بیزی از طریق مدل رگرسیون تصادفی برای ترکیبات مختلف THI و روز شیردهی (DIM) برآورد شد. در تابعی از روزهای شیردهی با رسیدن به اواخر دوره شیردهی، وراثت پذیری افزایش و در تابعی از شاخص دما-رطوبت (اوایل دوره شیردهی) با افزایش THI، وراثت پذیریکاهش می یابد. همبستگی های ژنتیکی برای مقادیرTHI و DIM با افزایش فاصله بین مقادیر، کاهش داشت که نشان می دهد رکوردها در THIهای مختلف مانند DIMهای مختلف از ژن های متفاوتی اثر میگیرند و هم چنین همبستگی های ژنتیکی برآورد شده برای درصد چربی پایین تر از مقادیر مربوط به تولید شیر بود. از برآوردهای حاصل از این تحقیق نتیجهگیری می شود که وارد کردن اثر ژنتیک افزایشی در مدل ارزیابی مقاومت به گرما در گله های گاوهای شیری اقلیم مدیترانه ای ایران لازم است و پتانسیل ژنتیکی حیوان می تواند نقش مهمی در کنترل میزان کاهش تولید شیر گله در شرایط آب و هوایی استرس زا ایفا کند.
http://www.aejournal.ir/article_92467_87905c6211ae95fbfd0dfdbf6e118cad.pdf
2019-07-23
37
46
استرس گرمایی
شاخص دما-رطوبت نسبی
وراثت پذیری
رکورد روز آزمون
سیما
ساور سفلی
simasavar@gmail.com
1
موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
رضا
سید شریفی
reza_seyedsharifi@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
محمدرضا
منصوریان
m_mansourian@yahoo.com
3
مرکز اصلاح نژاد و بهبود تولیدات دامی کشور، کرج، ایران
AUTHOR
مزدک
کاظمی
m_kazemi@yahoo.com
4
مرکز اصلاح نژاد و بهبود تولیدات دامی کشور، کرج، ایران
AUTHOR
رشیدی، ا. و میرزامحمدی،ا.، 1393. برآورد اثر متقابل ژنوتیپ و محیط برای صفات تولیدی در گاوهای هلشتاین ایران. نشریه علوم دامی (پژوهش و سازندگی). شماره 27، صفحات 25 تا 32.
1
مقدس زاده اهرابی، س.، 1381. بررسی پتانسیل ژنتیکی یک گله گاو هلشتاین با استفاده از رکوردهای روز آزمون و مدل رگرسیون تصادفی. پایان نامه کارشناسی ارشد ژنتیک و اصلاح نژاد دام. دانشکده کشاورزی. دانشگاه زنجان.
2
Abdullahpour, R.; MoradiShahrbabak, M.; Nejati Javaremi, A.; Vaez Torshizi, R. and Mrode, R., 2013. Genetic analysis of milk yield, fat and protein content in Holstein dairy cows in Iran: legendre polynomials random regression model applied. Arch. Tierz. Vol. 56, pp: 497-508.
3
Aguilar, I.; Misztal, I. and Tsuruta, S., 2010. Short communication. Genetic trends of milk yield under heat stress for US Holsteins. J. Dairy Sci. Vol. 93, pp: 1754-1758.
4
Bohlouli, M.; Shodja, J.; Alijani, S. and Eghbal, A., 2013. The relationship between temperature humidity index and test-day milk yield of Iranian Holstein dairy cattle using random regression model. Livest. Sci. Vol. 157, pp: 414-420.
5
Bohlouli, M.; Shodja, J.; Alijani, S.and Pirany, N., 2014. Interaction between genotype and geographical region for milk production traits of Iranian Holstein dairy cattle. Livest. Sci. Vol. 169, pp: 1-9.
6
Bohmanova, J.; Misztal, I. and Cole, J.B., 2007. Temperature-humidity indices as indicators of milk production losses due to heat stress. J. Dairy Sci. Vol. 90, pp: 1947-1956.
7
Bohmanova, J.; Misztal, I.; Tsuruta, S.; Norman, H.D. and Lawlor, T.J., 2008. Short communication: genotype by environment interaction due to heat stress. J. Dairy Sci. Vol. 91, pp: 840-846.
8
Brügemann, K.; Gernand, E.; König, U. and König, S., 2012. Defining and evaluating heat stress thresholds in different dairy cow production systems. Arch. Tierz. Vol. 1, pp: 13-24.
9
Brügemann, K.; Gernand, E.; König von Borstel, U. and König, S., 2011. Genetic analyses of protein yield in dairy cows applying random regression models with time dependent and temperature×humidity-dependent covariates. J. Dairy Sci. Vol. 94, pp: 4129-4139.
10
Correa-Calderon, A.; Armstrong, D.; Ray, D.; DeNise, S.; Enns, M. and Howison, C., 2004. Thermoregulatory responses of Holstein and Brown Swiss heat-stressed dairy cows to two different cooling systems. Int. J. Biometeorol. Vol. 48, pp: 142-148.
11
Hammami, H.; Rekik, B.; Soyeurt, H.; Bastin, C. and Gengler, N., 2008. Genotype × environment interaction for milk yield in Holsteins using Luxembourg and Tunisian populations. J. Dairy Sci. Vol. 91, pp: 3661-3671.
12
Igono, M.O. and Johnson, H.D., 1990. Physiological stress index of lactating dairy cows based on diurnal pattern of rectal temperature. J. Interdiscip. Cycle Res. Vol. 21, pp: 303-320.
13
Jakobsen, J.H.P.; Madsen, J.; Jensen, J.; Pedersen, L.G. and Sorensen, D.A., 2002. Genetic Parameters for Milk Production and Persistency for Danish Holsteins Estimated in Random Regression Models using REML. J. Dairy Sci. Vol. 85, pp: 1607-1616.
14
Krikpatric, M.; Lofsvold, D. and Bulmer, M., 1990. Analysis of the inheritance, selection and evaluation of growth trajectories. Journal Genetics. Vol. 124, pp: 979-993.
15
National Research Council (NRC). 1971. A guide to environmental research on animals. Natl. Acad. Sci., Washington, DC. Regional Operations Manual Letter C-31-76, Kansas City, MO, USA.
16
Pragna, P.; Archana, P.R.; Aleena, J.; Sejian, V.; Krishnan, G.; Bagath, M.; Manimaran, A.; Beena, V.; Kurien, E.K.; Varma, G. and Bhatta, R., 2017. Heat Stress and Dairy Cow: Impact on Both Milk Yield and Composition. International J. Dairy Sci. Vol. 12, pp: 1-11.
17
Ravagnolo, O.; Misztal, I. and Hoogenboom, G., 2000. Genetic Component of Heat Stress in Dairy Cattle, Development of Heat Index Function. J Dairy Sci. Vol. 83, pp: 2120-2125.
18
Robertson, A., 1959. The sampling variance of the genetic correlation coefficient. Biometrics. Vol. 15, pp: 469-485.
19
Rojas-Downing, M.M.; Nejadhashemi, A.P.; Harrigan, T. and Woznicki, S.A., 2017. Climate change and livestock: Impacts, adaptation, and mitigation. Climate Risk Management. Vol. 16, pp: 145-163.
20
Savar Sofla, S.; TaheriDezfuli, B. and Mirzaei, F., 2011. Interaction between genotype and climates for Holstein milk production traits in Iran. African Journal of Biotechnology. Vol. 10, pp: 11582-11587.
21
ORIGINAL_ARTICLE
اثر تنش القایی هیدروژن پراکسید بر فراسنجه های تولیدمثلی گامت های نر
در این تحقیق اثرات تنش القایی ملایم هیدروژن پراکسید در گامت های نر بر رشد رویان های حاصل از روش برون تنی مورد بررسی قرار گرفت. بدین منظور، نمونه های اسپرم در آزمایشگاه با غلظت های 0، 10، 50 ، 100 و 200 میکرومول بر لیتر هیدروژن پراکسید تیمار شدند و فراسنجه های مربوط به حرکت کل، حرکت پیش رونده، حرکت سریع، زنده مانی و کیفیت غشاء اسپرم ثبت و در گروه های تیماری مختلف مقایسه گردید. نتایج نشان داد که افزایش هیدروژن پراکسید تا سطح 50 میکرومولار با گروه شاهد تفاوت معنی داری ندارد و بیش از آن نیز باعث کاهش معنی دار در فراسنجه های حرکتی، زنده مانی و سلامت غشاء اسپرم می شود.
http://www.aejournal.ir/article_92717_7c4df831ee330a724399859f05b33b6f.pdf
2019-07-23
47
52
تنش ملایم القایی
هیدروژن پراکسید
اسپرم
گامت نر
کاوان
نیک دل
nikdel.kavan@gmail.com
1
گروه علوم دامی،دانشکده علوم کشاورزی و صنایع غذایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
مهدی
امین افشار
aminafshar@gmail.com
2
گروه علوم دامی،دانشکده علوم کشاورزی و صنایع غذایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
عبدالله
محمدی سنگ چشمه
a.mohammadis@gmail.com
3
گروه علوم دامی، پردیس ابوریحان، دانشگاه تهران، پاکدشت، ایران
AUTHOR
ناصر
امام جمعه گاشان
nasser_ejk@yahoo.com
4
گروه علوم دامی،دانشکده علوم کشاورزی و صنایع غذایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
احسان
سیدجعفری
seyedjafari@ut.ac.ir
5
گروه بیوتکنولوژی، دانشکده علوم، دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
شرفی، م.؛ زندی، م.؛ شاهوردی، ع.؛ شاکری، م.؛ نجاتی امیری، ا. و نجاتی جوارمی، م.، 1393. اثرات مدت تنش القایی اکسیداتیو ملایم پیش از انجماد بر کیفیت اسپرم گاو بعد از فرایند انجماد/ذوب، مجله سلول و بافت. دوره 5، صفحات 401 تا 408.
1
Agarwal, A.; Gupta, S. and Sharma, R.K., 2005. Role of oxidative stress in female reproduction. Reprod Biol Endocrinol Vol. 3, 28 p.
2
Agarwal, A.; Saleh, R.A. and Bedaiwy, M.A., 2003. Role of reactive oxygen species in the pathophysiology of human reproduction. Fertil Steril. Vol. 79, pp: 829-843.
3
Balaban, R.S.; Nemoto, S. and Finkel, T., 2005. Mitochondria, oxidants and aging. Cell. Vol. 120, pp: 483-495.
4
Du, Y.; Lin, L.; Schmidt, M.; Bogh, I.B.; Kragh, P.M.; Sorensen, C.B.; Li, J.; Purup, S.; Pribenszky, C.; Molnar, M.; Kuwayama, M.; Zhang, X.; Yang, H.; Bolund, L. and Vajta, G., 2008. High hydrostatic pressure treatment of porcine oocytes before handmade cloning improves developmental competence and cryosurvival. Cloning Stem Cells. Vol. 10, pp: 325-330.
5
Feugang, J.M.; de Roover, R.; Moens, A.; Leonard, S.; Dessy, F. and Donnay, I., 2004. Addition of beta-mercaptoethanol or Trolox at the morula/blastocyst stage improves the quality of bovine blastocysts and prevents induction of apoptosis and degeneration by prooxidant agents. Theriogenology. Vol. 61, pp: 71-90.
6
Goto, Y.; Noda, Y.; Mori, T. and Nakano, M., 1993. Increased generation of reactive oxygen species in embryos cultured in vitro. Free Radic Biol Med. Vol. 15, pp: 69-75.
7
Guerin, P.; El Mouatassim, S. and Menezo, Y., 2001. Oxidative stress and protection against reactive oxygen species in the pre-implantation embryo and its surroundings. Hum Reprod Update. Vol. 7, pp: 175-189.
8
Harvey, A.J.; Kind, K.L.; Pantaleon, M.; Armstrong, D.T. and Thompson, J.G., 2004. Oxygen regulated gene expression in bovine blastocysts. Biol Reprod. Vol. 71, pp: 1108-1119.
9
Khurana, N.K. and Niemann, H., 2000. Energy metabolism in preimplantation bovine embryos derived in vitro or in vivo. Biol Reprod. Vol. 62, pp: 847-856.
10
Klaunig, J.E. and Kamendulis, L.M., 2004. The role of oxidative stress in carcinogenesis. Annu Rev Pharmacol Toxicol. Vol. 44, pp: 239-267.
11
Liu, L. and Keefe, D.L., 2000. Cytoplasm mediates both development and oxidation-induced apoptotic cell death in mouse zygotes. Biol Reprod. Vol. 62, pp: 1828-1834.
12
Mello Filho, A.; Hoffmann, M. and Meneghini, R., 1984. Cell killing and DNA damage by hydrogen peroxide are mediated by intracellular iron. Biochemical Journal. Vol. 218, pp: 273-275.
13
Morales, H.; Tilquin, P.; Rees, J.F.; Massip, A.; Dessy, F. and Van Langendonckt, A., 1999. Pyruvate prevents peroxide-induced injury of in vitro preimplantation bovine embryos. Mol Reprod Dev. Vol. 52, pp: 149-157.
14
Powers, S.K. and Jackson, M.J., 2008. Exercise-induced oxidative stress: cellular mechanisms and impact on muscle force production. Physiol Rev. Vol. 88, pp: 1243-1276.
15
Pribenszky, C.; Du, Y.; Molnar, M.; Harnos, A. and Vajta, G., 2008. Increased stress tolerance of matured pig oocytes after high hydrostatic pressure treatment. Anim Reprod Sci. Vol. 106, pp: 200-207.
16
Rinaudo, P.F.; Giritharan, G.; Talbi, S.; Dobson, A.T. and Schultz, R.M., 2006. Effects of oxygen tension on gene expression in preimplantation mouse embryos. Fertil Steril. Vol. 86, pp: 1252-1265.
17
Sharma, A., 2015. Investigation on the Effects of Exogenous H2O2on Sperm Motility, LPO, Catalase and SOD Levels in Seminal Plasma. Health Science Journal.Vol. 10, pp: 1-10.
18
Sudano, M.J.; Paschoal, D.M.; da Silva Rascado, T.; Magalhães, L.C.O.; Crocomo, L.F.; de Lima-Neto, J.F. and da Cruz Landim-Alvarenga, F., 2011. Lipid content and apoptosis of in vitro produced bovine embryos as determinants of susceptibility to vitrification. Theriogenology. Vol. 75, pp: 1211-1220.
19
Takahashi, M., 2012. Oxidative stress and redox regulation on in vitro development of mammalian embryos. J Reprod Dev. Vol. 58, pp: 1-9.
20
Wu, D. and Cederbaum, A.I., 2003. Alcohol, oxidative stress, and free radical damage. Alcohol Res Health. Vol. 27, pp: 277-284.
21
ORIGINAL_ARTICLE
اثر اندازه ذرات و مرحله برداشت ذرت علوفهای بر خصوصیات سیلاژ، گوارش پذیری و مصرف اختیاری مواد مغذی گاوهای شیری هلشتاین
افزایش محتوای الیاف سیلاژ ذرت به واسطه افزایش سن گیاه، در جیره گاوهای شیری، سبب افزایش لایهبندی مواد جامد شکمبهای و فعالیت نشخوار و خرد کردن ذرات در شکمبه میشود. از طرف دیگر، اندازه ذرات به طور انتخابی در شکمبه میمانند و این موضوع توجیه کننده تفاوت در قابلیت هضم جیرههای با ترکیبات شیمیایی مشابه است. ذرت علوفه ای کشت شده در شرایط استاندارد در مراحل یک سوم خط شیری و دانه خمیری برداشت شد.اثر مرحله برداشت بر خصوصیات سیلویی ذرت علوفه ای و اثر مرحله برداشت و اندازه ذرات بر مقدار مصرف و گوارش پذیری مواد مغذی گاوهای شیری هلشتاین با طرح کاملاً تصادفی تجزیه آماری شد. نتایج حاصل از این تحقیق نشان داد اثر مرحله برداشت بر ترکیب شیمیایی و اسیدهای تخمیری سیلاژ معنی دار بود. در ارزیابی ظاهری سیلاژ ذرت علوفهای مرحله برداشت دوم به طور معنیداری نمره بالاتری به خود اختصاص داد. اثر اندازه ذرات و مرحله برداشت بر مصرف ماده خشک و مصرف ترکیبات شیمیایی جیره معنی دار بود. مرحله برداشت و اندازه ذرات توانست اثر معنی دار بر گوارش پذیری ماده خشک و ماده آلی بگذارد. در مجموع جیرههای حاوی ذرت علوفهای برداشت دوم، فیبر نامحلول در شوینده خنثی غیرقابل هضم (iNDF) بیش تر، مصرف ماده خشک بیش تر و گوارش پذیری ماده خشک و انرژی قابل متابولیسم کم تری داشتند. جیرههای حاوی ذرت علوفهای با اندازه ذرات بلند گوارش پذیری ماده خشک پایینتر و گوارش پذیری ماده آلی بالاتر داشتند.
http://www.aejournal.ir/article_92827_e8bbc16c6cd89629539b852d184d93b4.pdf
2019-07-23
53
62
گوارش پذیری
مرحله برداشت
مصرف خوراک
سیلاژ ذرت علوفهای
اندازه ذرات
الیاف نامحلول در شوینده خنثی غیرقابل هضم
پوریا
احسانی
p.ehsani@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران
LEAD_AUTHOR
اسداله
تیموری یانسری
astymori@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران
AUTHOR
یدالله
چاشنی دل
ychashnidel2002@yahoo.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران
AUTHOR
غلامرضا
قربانی
gghorbani@yahoo.com
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
شماع، م. و آصفی، ع. ر.، 1380. گزارش طرح استفاده از پسماندههای خشک میدانهای میوه و ترهبار برای تغذیه گوسالههای نر پرواری. معاونت پژوهش و توسعه، سازمان بازیافت و تبدیل مواد، شهرداری تهران.
1
قنبری، ا.؛ احمدیان، ا.؛ میر، ب. و رزمجو، ا.، 1389. بررسی تاثیر زمان برداشت بر ویژگی های کمی و کیفی علوفة ذرت. مجله اکوفیزیولوژی گیاهان زراعی و علف های هرز. سال 4، شماره 15، صفحات 41 تا 54.
2
ولی زاده، ر.؛ ناصریان، ع. و اژدری فرد، ا.، 1382. بیوشیمی سیلاژ (ترجمه). انتشارات دانشگاه فردوسی مشهد. 413 صفحه.
3
Alderman, G. and Cottrill, B.R., 1995. Energy and protein requirements of ruminants. An advisory manual prepared by the AFRC Technical Committee on Responses to Nutrients. United Kingdom: CAB International, Wallingford, Oxon.
4
AOAC. 2016. Official methods of analysis, 20th Edition. Association of Official Analytical Chemists, Washington, D. C, USA.
5
Bal, M.A.; Shaver, R.D.; Jirovec, A.G.; Shinners, K.J. and Coors, J.G., 2000. Crop processing and chop lengh of corn silage: Effects on intake, digestion and milk production by dairy cows. J. Dairy Sci. Vol. 83, pp: 1264-1273.
6
Bayat, A.R.; Rinne, M.; Kuoppala, K.; Ahvenjarvi, S. and Huhtanen, P., 2011. Ruminal large and small particle kinetics in dairy cows fed primary growth and regrowth grass silages harvested at two stages of growth. J. Anim Feed Sci and Tech. Vol. 165, pp: 51-60.
7
Beauchemin, K.A.; Yang, W.Z. and Rode, L.M., 2003. Effects of particle size of alfalfa-based dairy cow diets on chewing activity, rumen fermentation, and milk production. J. Dairy Sci. Vol. 86, No. 630-643.
8
Beauchemin, K.A. and Yang, W.Z., 2005. Effects of physically effective fiber on intake, chewing activity, and ruminal acidosis for dairy cows fed diets based on corn silage. J. Dairy Sci. Vol. 88, pp: 2117-2129.
9
Bolsen, K.K.; Ashbell, G. and Weinberg, Z.G., 1996. Silage fermentation and silage additives. Aust. J. Appl. Sci. Vol. 9, pp: 483-493.
10
Broderick, G.A. and Kang, J.H., 1980. Automated simultaneous determination of ammonia and total amino acids in ruminal fluid and in vitro media. Journal of Dairy Science. Vol. 63, pp: 64-75.
11
Chase, L.E., 1988. Controlling silage quality. Cornell nutrition conference for feed manufacture, Cornell University, Ithaca, New York. 41 p.
12
Deriaz, R.E., 1961. Routine analysis of carbohydrates and lignin in herbage. Journal of the Science of Food and Agriculture. Vol. 12, pp: 152-159.
13
Faithfull, N.T., 2002. Methods in Agricultural Chemical Analysis: A Practical Handbook. CAB International. 304 p.
14
Filya, I., 2004. Nutritive value and aerobic stability of whole crop maize silage harvested at four stages of maturity. Anim. Feed Sci. Technol. Vol. 116, pp: 141-150.
15
Fox, D.G., 2006. Arevised CNCPS feed carbohydrate fractionation Schem for formulating rations for ruminants. J. Anim. Feed Sci. Technol. Vol. 136, pp: 167-190.
16
Givens, D.I. and Deaville, E.R., 2001. Comparison of major carbohydrate fractions and cell wall digestibility in silages made from older and newer maize genotypes grown in the UK. Anim. Feed Sci. Technol. Vol. 89, pp: 69-82.
17
Golchin-Gelehdooni, S.; Teimouri-Yansari, A. and Farhadi, A., 2011. The effects of alfalfa particle size and acid treated protein on ruminal chemical composition liquid particulate, escapable and non escapable phases in Zel sheep. African Journal of Biotechnology. Vol. 10, No. 63, pp: 13956-13967.
18
Gran, R. and Stock, R., 1994. Harvesting corn and sorghum for silage. University of Nebraska. Extension service. Institute of Agriculture and Natural Resources.
19
Hatew, B.;van Laar, H.; de Jonge, L.H.; Bannink, A. and Dijkstra, J., 2016. Increasing harvest maturity of whole-plant corn silage reduces methane emission of lactating dairy cows. J. Dairy Sci. Vol. 99, pp: 1-15.
20
Johnson, L.M.; Harrison, J.H.; Davidson, D.; Robutti, J.L.; Swift, M.; Mahanna, W.C. and Shinners, K., 2002. Corn silage management I: Effects of hybrid, maturity, and mechanical processing on chemical and physical characteristics. J. Dairy Sci. Vol. 85, pp: 833-853.
21
Kawas, J.R.; Jorgensen, N.A.; Hardie, A.R. and Danelon, J.L., 1983. Changing in feed value of alfalfa with stage of maturity and concentrate level. Dairy Science. Vol. 66, No. 1, 181 p.
22
Khorvash, M.; Colombatto, D.; Beauchemin, K.A.; Ghorbani, G.R. and Samei, A., 2005. Use of absorbant and inoculants to enhance the quality of corn silage. Canadian Journal of Animal Science. Vol. 86, pp: 97-107.
23
Kononoff, P.J., 2002. The effect of ration particle size on dairy cows in early lactation. Ph.D. Thesis. The Pennsylvania State Univ. 143 p.
24
Kononoff, P.J. and Heinrichs, A.J., 2003. The effect of corn silage particle size and cottonseed hulls on cows in early lactation. J. Dairy Sci. Vol. 86, pp: 2438-2451.
25
Krause, K.M.; Combs, D.K. and Beauchemin, K.A., 2003. Effects of increasing levels of refined cornstarch in the diet of lactating da iry cows on performance and ruminal pH. J. Dairy Sci. Vol. 86, pp: 1341-1353.
26
Krizsan, S.J.; Ahvenjärvi, S. and Huhtanen, P., 2010. A meta-analysis of passage rate estimated by rumen evacuation with cattle and evaluation of passage rate prediction models. J. Dairy Sci. Vol. 93, pp: 5890-5901.
27
MAFF/ADAS. 1986. The Analysis of Agricultural Materials, Reference Book 427. HMSO, London.
28
McDonald. P.; Edwards, R.A.; Greenhalgh, J.F.D. and Morgan, C.A., 1995. Animal Nutrition. Longmans, London.
29
Menke, K.H. and Stingass, H., 1987. Estimation of the energetic feed value obtained from chemical analysis and in vitro gas production using rumen fluid. Animal Research and Development. Vol. 28, pp: 7-12.
30
Mertens, D.R., 1997. Creating a system for meeting the fiber requirements of dairy cows. Journal Dairy Science. Vol. 80, pp:1463-1481.
31
Mourin˜o, F.; Akkarawongosa, R. and Weimer, P.J., 2006. Initial pH as a determinant of cellulose digestion rate by mixed ruminal microorganisms in vitro. J. Dairy Sci. Vol. 84, pp: 848-859.
32
National Research Council. 2001. Nutrient Requirements of Dairy Cattle, 7 th revised ed. National Academic Science, Washington, DC, USA.
33
Oba, M. and Allen, M.S., 2000. Effects of brown midrib 3 mutation in corn silage on productivity of dairy cows fed two concentrations of dietary neutral detergent fiber: 2. Chewing activity. J. Dairy Sci. Vol. 83, pp: 1342-1349.
34
Phipps, R.H.; Sutton, J.D.; Beever, D.E. and Jones, A.K., 2000. The effect of crop maturity on the nutritional value of maize silage for lactating dairy cows. 3. Food intake and milk production. Animal Science. Vol. 71, No. 2, pp: 401-409.
35
Prostko, E.P.; Muir, J.P. and Stokes, S.R., 1998. The influence of harvest timing on forage sorghum silage yield and quality. Cooperative Extension Texas A&M University. Research and Extension Center.
36
Rezvani-Moghaddam, P. and Nasiri-Mahallati, M., 2000. Study of the effect of harvesting stages on nutrient, yield and planting properties of tree cultivars of forage sorghum. 6th Congress of Agronomy and Plant Breeding Science of Iran. 235 p.
37
SAS Institute. 2001. SAS User’s Guide. Statistic, Version 8.2 ed. SAS Inst., Inc., Cary, NC.
38
Seddighinia, H., 2005. The effect of harvest times on yield and quality of seed sorghum silage. Thesis for MS.c degree in Agronomy, Faculty of Agriculture, Zabol University. (In Persian)
39
Shepherd, D.M., 2012. Interactions in rumen pool characteristics by dairy cows fed two concentrations of a co-product from corn wet milling with different forage sources. Presented in Partial Fulfillment of the Requirements for the Degree Master of Science in the Graduate School of the Ohio State University.
40
Tafaj, M.; Maulbetsch, A.; Zebeli, Q.; Steingass, H. and Drochner, W., 2005. Effects of physically effective fiber concentration of diets consisting of hay and slowly degradable concentrate on chewing activity in mid lactation dairy cows under constant intake level. Arch. Anim. Nutr. Vol. 59, pp: 313-324.
41
Tafaj, M.; Junck, B.; Maulbetsch, A.; Steingass, H.; Piepho, H.P. and Drochner, W., 2004. Digesta characteristics of dorsal, middle and ventral rumen of cows fed with different hay qualities and concentrates levels. Arch. Anim. Nutr. Vol. 58, pp: 325-342.
42
Tan, A.S. and Tumer, S., 1996. Research on the evulation of silage quality of sunflower. J. Aegean Agric. Res. Vol. 6, pp: 45-57.
43
Teimouri Yansari, A.; Valizadeh, R.; Naserian, A.; Christensen, D.A.; Yu, P. and Eftekhari Shahroodi, F., 2004. Effects of alfalfa particle size and specific gravity on chewing activity, digestibility, and performance of Holstein dairy cows. J. Dairy Sci. Vol. 87, pp: 3912-3924.
44
Thomas, T.A., 1977. An automated procedure for the determination of soluble carbohydrate in herbage. Journal of Science of Food and Agriculture. Vol. 28, pp: 639-642.
45
Van Soest, P.J.; Robertson, J.B. and Lewis, B.A., 1991. Methods for dietary fiber, neutral detergent fiber and non starch polysaccharides in relation to animal nutrition. Journal of Dairy Science. Vol. 74, pp: 3583-3597.
46
Weatherburn, M.W., 1967. Phenol- hypochlorite reaction for determination of ammonia. Analytical Chemistry. Vol. 39, pp: 971-974.
47
Woodford, J.A.; Jorgensen, N.A. and Barrington, G.P., 1986. Impact of dietary fiber and physical form on performance of lactating dairy cows. J. Dairy Sci. Vol. 69, pp: 1035-1047.
48
Zebeli, Q.; Aschenbach, J.R.; Tafaj, M.; Boguhn, J.; Ametaj, B.N. and Drochner, W., 2012. Role of physically effective fiber and estimation of dietary fiber adequacy in high-producing dairy cattle. J. Dairy Sci. Vol. 95, pp: 1041-1056.
49
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی هاپلوگروه های مادری جمعیت اسب های استان اردبیل با استفاده از ناحیه کنترل ژنوم میتوکندریایی
حفظ نژادهای بومی از اهداف مهم اصلاح نزادی محسوب میشود و جهت شناسایی ساختار ژنتیکی جمعیت باقی مانده اساس حفظ نژادی است. لذا این پژوهش با هدف بررسی ساختار ژنتیکی اسب های استان اردبیل و مقایسه با دیگر نژادهای خارجی با استفاده از ناحیه کنترل (D- loop) ژنوم میتوکندریایی انجام گرفت. جهت انجام آزمایش DNA ژنومی استخراج و مستقیماً پس از تکثیر 430 جفت بازی از ناحیه کنترل با استفاده از روش سنگر از 100 رأس اسب بومی مربوط به استان اردبیل توالی یابی گردید. آنالیز توالیها منجر به شناسایی 43 جایگاه چندشکلی شد که منجر به ایجاد 40 هاپلوتیپ مختلف گردید که براساس هاپلوگروه های شناسایی شده در 9 هاپلوگروه (A،B ،C ، G ،I ،L ،M ،P و Q) قرار گرفتند. مقدار تنوع نوکلئوتیدی، تنوع هاپلوتیپ و Dتاجیما در اسب های بومی استان اردبیل به ترتیب 0/02412، 0/877 و 0/571- به دست آمد. میزان D تاجیما انحراف معنیداری را نشان نداد. نتایج این مطالعه نشان داد که خط مادری در اسب های اردبیل از تنوع بالایی برخوردار است.
http://www.aejournal.ir/article_92858_3ec69783068a307215aace44f86f6c88.pdf
2019-07-23
63
68
اسب بومی
هاپلوتیپ
تنوع نوکلئوتیدی
تنوع ژنتیکی
ژنوم میتوکندریایی
مصطفی
عمری کولانکوه
mostafaomri49@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
نعمت
هدایت ایوریق
nhedayat@uma.ac.ir
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
LEAD_AUTHOR
آزاده
بوستان
boustan_62@yahoo.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی مغان، دانشگاه محقق اردبیلی، مغان، ایران
AUTHOR
رضا
سید شریفی
reza_seyedsharifi@yahoo.com
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
وحید
واحدی
vahedi.vahid59@gmail.com
5
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی مغان، دانشگاه محقق اردبیلی، مغان، ایران
AUTHOR
رضا
خلخالی ایوریق
rezakhalkhali110@gmail.com
6
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی مغان، دانشگاه محقق اردبیلی، مغان، ایران
AUTHOR
صارمیان فر، م.؛ موحدی، ا.؛ رافعی بروجنی، م. و نجفی، م.، 1393. تأثیر آموزش مهارت های اسب سواری بر تعاملات اجتماعی کودکان دارای اختلالات طیف اوتیسم. نشریه رفتارحرکتی. شماره 21، صفحات 23 تا 46.
1
شرقی، ق. و نوروزیان، م.ع.، ۱۳۸۹. اصول پرورش اسب. انتشارات نوربخش تهران.
2
Achilli, A.; Olivieri, A.; Soares, P.; Lancioni, H.; Kashani, B.H.; Perego, U.A. and Felicetti, M., 2012. Mitochondrial genomes from modern horses reveal the mhaplogroups that underwent domestication. Proceedings of the National Academy of Sciences. Vol. 109, pp: 2449-2454.
3
Alakbarl, F., 2016. Horses of Azerbaijan a Historical Survey Baku. AAMH41 P.
4
Bandelt, H.J.; Forster, P. and Rohl, A., 1999. Median joining networksfor inferring intraspecific phylogenies. Molecular Biology and Evolution. Vol. 16, pp: 37-48.
5
Bowling, A.T.; Del Valle, A. and Bowling, M., 2000. A pedigree‐based study of mitochondrial d‐loop DNA sequence variation among Arabian horses. Animal Genetics. Vol. 31, pp: 1-7.
6
Cardinali, I.; Lancioni, H.; Giontella, A.; Capodiferro, M.; Capomaccio, S.; Buttazzoni, L.; Biggio, G.; Cherchi, R.; Albertini, E.; Olivieri, A.; Cappelli, K.; Achilli, A. and Silvestrelli, M., 2016. An Over view of ten Italian horse breeds through mitochondrial DNA. PLoSONE. Vol. 11, pp: e0153004.
7
Fotovati, A., 2000. Persian horse breeds from ancient time to present and their rules in development of world horse breeds. Asian Australasian Journal of Animal Science. Vol. 13, pp: 401-401.
8
Gaur, U.; Tantia, M.S.; Mishra, B.; Bharani Kumar, S.T.; Vijh, R.K. and Chaudhury, A., 2018. Mitochondrial D-loop analysis for uncovering the population structure and genetic diversity among the indigenous duck (Anas platyrhynchos) populations of India. Mitochondrial DNA Part A. Vol. 29, No. 2, pp: 212-219.
9
Głażewska, I., 2010. Speculations on the origin of the Arabian horse breed. Livestock Science. Vol. 129, pp: 49-55.
10
Głażewska, I.; Wysocka, A.; Gralak, B.; Prus, R. and Sell, J., 2007. A new view on dam lines in Polish Arabian horsesbased on mtDNA analysis. Genetics Selection Evolution. Vol. 39, No. 5, 609 p.
11
Hedayat Evrigh, N.; Omri, M.; Boustan, A.; Seyedsharifi, R. and Vahedi, V., 2018. Genetic Diversity and Structure of Iranian Horses' Population Based on Mitochondrial Markers. Journal of Equine Veterinary Science. Vol. 64, pp: 107-111.
12
Hill, E.W.; Bradley, D.G.; Al‐Barody, M.; Ertugrul, O.; Splan, R.K.; Zakharov, I. and Cunningham, E.P., 2002. History and integrity of thoroughbred dam lines revealed in equine mtDNA variation. Animal genetics, Vol. 33, No. 4, pp: 287-294.
13
Kefena, E.; Dessie, T.; Tegegne, A.; Beja-Pereira, A.; Kurtu, M.Y.; Rosenbom, S. and Han, J.L., 2014. Genetic diversity and matrilineal genetic signature of native Ethiopian donkeys inferred from mitochondrial DNA sequence polymorphism. Livestock Science. Vol.167, pp: 73-79.
14
Khanshour, A.M. and Cothran, E.G., 2013. Maternal phylogenetic relationships and genetic variation among Arabian horse populations using whole mitochondrial DNA D-loop sequencing. BMC Genetics. Vol. 14, 83 p.
15
Lai, S.J.; Liu, Y.P.; Liu, Y.X.; Li, X.W. and Yao, Y.G., 2006. Genetic diversity and origin of Chinese cattle revealed by mtDNA D-loop sequence variation. Molecular phylogenetics and evolution. Vol. 38, No. 1, pp: 146-154.
16
Moridi, M.; Masoudi, A.; Vaez Torshizi, R. and Hill, E., 2013. Mitochondrial DNA D‐loop sequence variation in maternal lineages of Iranian native horses. Animal Genetics. Vol. 44, No. 2, pp: 209-213.
17
Outram, A.K.; Stear, N.A.; Bendrey, R.; Olsen, S.; Kasparov, A.; Zaibert, V.; Thorpe, N. and Evershed, R.P., 2009. The earliest horse harnessing and milking. Science. Vol. 323, pp: 1332-1335.
18
Rozas, J.; Librado, P.; Sanchez-Delbarrio, J.; Messeguer, X. and Rozas, R., 2009. DnaSP 5.10. 00. Universitat de Barcelona, Spain.
19
Takasu, M.; Ishihara, N.; Tozaki, T.; Kakoi, H.; Maeda, M. and Mukoyama, H., 2014. Genetic diversity of maternal lineage in the endangered Kiso horse based on polymorphism of the mitochondrial DNA D-loop region. Journal of Veterinary Medical Science. Vol. 76, pp: 1451-1456.
20
Tamura, K.; Peterson, D.; Peterson, N.; Stecher, G.; Nei, M. and Kumar, S., 2011. MEGA5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Molecular Biology and Evolution. Vol. 28, pp: 2731-2739.
21
Warmuth, V.; Eriksson, A.; Bower, M.A.; Barker, G.; Barrett, E.; Hanks, B.K. and Soyonov, K., 2012. Reconstructing the origin and spread of horse domestication in the Eurasian steppe. Proceedings of the National Academy of Sciences. Vol. 109, pp: 8202-8206.
22
Xiao, X.; Yang, S.; Lin, D.; Wang, Y. and Hua, Y., 2016. The complete mitochondrial genome and phylogenetic analysis of Chinese Jianchang horse (Equus caballus). Clon Transgen. Vol. 5, No. 149, 2 p.
23
Zhang, T.; Lu, H.; Chen, C.; Jiang, H. and Wu, S., 2012. Genetic Diversity of mtDNA d-loop and maternal origin of three Chinese native horse breeds. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences. Vol. 25, 921 p.
24
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین ارزش غذایی سرشاخه دو گونه درخت کنار (Ziziphus spina-christi, Ziziphus mauritiana) در تغذیه گوسفند
این پژوهش به منظور تعیین ارزش غذایی سرشاخه و قابلیت هضم دو گونه کنار (Ziziphus spina-christi, Ziziphus mauritiana) در تغذیه دام انجام شد. جهت تعیین قابلیت هضم، سرشاخه هرکدام از گونههای درخت کنار به نسبتهای 10، 20 و 30 درصد با خوراک پایه (یونجه خشک) مخلوط شده و هر جیره روی 4 رأس گوسفند نر بالغ، با روش جمعآوری مدفوع مورد آزمایش قرار گرفت. تیمارهای آزمایش شامل 7 جیره شامل: یک جیره شاهد (یونجه)، 3 جیره حاوی سرشاخه کنار بومی و 3 جیره حاوی سرشاخه کنار هندی در قالب طرح کامل تصادفی بود. نتایج ترکیبات شیمیایی ماده خشک، ماده آلی، پروتئین خام، چربی خام، دیواره سلولی، دیواره سلولی منهای همیسلولز، انرژی خام و میزان تانن برای سرشاخه کنار بومی بهترتیب 94/2، 90/1، 14/4، 2/0، 30/7، 17/6 درصد، 4517/7 کالری در گرم و 3/1 درصد و برای سرشاخه کنار هندی بهترتیب 94/6، 83/3، 14/5، 1/7، 33/9، 18/5 درصد، 4447/2 کالری در گرم و 3/9 درصد بود. در بین تیمارهای کنار هندی و بومی، بهترین ضریب قابلیت هضم مواد مغذی را 10 درصد سرشاخه کنار بومی داشت. ضرایب قابلیت هضم (درصد) ماده خشک، ماده آلی، پروتئین خام، دیواره سلولی، دیواره سلولی منهای همیسلولز و انرژی خام تیمار 10 درصد سرشاخه کنار بومی بهترتیب 68، 59/1، 49/6، 76/1، 68/1 و 71/7 بهدست آمد. با توجه نتایج این مطالعه و ترکیب شیمیایی و قابلیت هضم هر دو گونه کنار در مقایسه با یونجه، می تواند در جیره روزانه دامهای مناطق کنارخیز استفاده شود و برای بهبود وضعیت پرورش دامهای کوچک در زمینهای خشک و بهویژه در شرایط خشکسالی استان بوشهر دارای پتانسیل مناسبی است.
http://www.aejournal.ir/article_92899_f18e61dc36afa773a7addaa83b10fde2.pdf
2019-07-23
69
76
ارزش غذایی
استان بوشهر
سرشاخه کنار بومی
سرشاخه کنار هندی
قابلیت هضم
محمود
دشتی زاده
dashty1350@gmail.com
1
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشارزی و منابع طبیعی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
عبدالمهدی
کبیری فرد
m51kabiri@gmail.com
2
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشارزی و منابع طبیعی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران
AUTHOR
حسین
خاج
hosseinkhaj@yahoo.com
3
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشارزی و منابع طبیعی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران
AUTHOR
امیر ارسلان
کمالی
aakamli52@gmail.com
4
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشارزی و منابع طبیعی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران
AUTHOR
بصیری، ع.، 1373. طرحهای آماری در علوم کشاورزی. انتشارات دانشگاه شیراز. 595 صفحه.
1
بهمنی، ع.؛ فروزنده شهرکی، ا.د.؛ قلمکاری، غ.ر. و دشتیزاده، م.، 1391. تأثیر استفاده از سطوح مختلف برگ کنار بمبئی بر قابلیت هضم، فراسنجههای خونی و عملکرد برههای نر پرواری. پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشگاه آزاد اسلامی واحد خوراسگان.
2
ردی، د.، 1386. اصول تغذیه دام و تکنولوژی مواد خوراکی (ترجمه جعفری خورشیدی، ک.، 1386). انتشارات دانشگاه آزاد اسلامی واحد سواد کوه. 451 صفحه.
3
صادقی، س.؛ جوانشیر، م.ک.؛ نمیریان،م. و لطفیان، ح.، 1374. بررسی برخی از ویژگی های اکولوژیک سه گونه از جنس Ziziphus در استان بوشهر. پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشکده منابع طبیعی دانشگاه تهران.
4
عالم زاده،ب.؛ نوروزی، س. و کردونی، ع.، 1380. تعیین ترکیبات شیمیایی و ضرایب هضم کاههای ماش، کنجد، گندم، جو و برنج در استان خوزستان. فصلنامه پژوهش و سازندگی. جلد 14، شماره 4، پیآیند 53، صفحات 46 تا 49.
5
عصّاره، م.ح.،1387. ویژگی های زیستی درختان کنار در ایران و معرفی گونههای جنس Ziziphus. چاپ اول، موسسه تحقیقات جنگل ها و مراتع کشور، تهران. 571 صفحه.
6
قربانی، ا.، 1375. استفاده از کنجاله زیتون در تغذیه گاوهای شیری. پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشگاه تهران.
7
مکدونالد، پ.؛ ادوارد ر.ا.ز. و گرین هال، ج.ف.د.، 1996. تغذیه دام. ویرایش پنجم. چاپ دوم. ترجمه صوفی سیاوش، ر. و جانمحمدی، ح.، 1383. انتشارات آئیژ. تهران. 840 صفحه.
8
Abdu, S.B.; Ehoche, O.W.; Adamu, A.M.; Bawa, G.S.; Hassan, M.R.; Yashin S.M. and Adamu, H.Y., 2012. Effect of varying levels of Zizyphus (Zizyphus mauritiana) leaf meal inclusion in concentrate diet on performance of growing Yankasa ram lambs fed maize stover basal diet. Iranian J. Applied Anim. Sci. Vol. 2, No. 4, pp: 323-330.
9
Aganga, A.A.; Adogla–Bessa. T.; Omphile, U.J. and Tshireletso, K., 2000. Significance of browse in the nutrition of Tswana goats. Archive Zootec. Vol. 49, pp: 469-480.
10
Association of Official Analytical Chemists (AOAC). 2001. Official Methods of Analysis, 12th edn. AOAC, Washington, DC. pp: 129-136.
11
Azim, A.; Ghazanfar, S.; Latif A. and Ahmad Nadeem, M., 2011. Nutritional evaluation of some top fodder tree leaves and shrubs of district Chakwal, Pakistan in relation to ruminants requirements. Pakistan J. Nutr. Vol. 10, No. 1, pp: 54-59.
12
Barry, T.N. and Duncan, S.J., 1984. The role of condensed tannins in the nutritional value of Lotus pedunculatus for sheep. 1. Voluntary intake. British Journal of Nutrition. Vol. 51, pp: 485-491.
13
Ben Salem, H.S.; Abidi, S.; Makker, H.P.S. and Nefzaoui, A., 2005. Wood ash treatment, a cost-effective way to deactivate tannins in Africa cyanophylla I Lindl. Foliage and to improve digestion by Barbarine sheep. Anim. Feed Sci Technol. Vol. 123, pp: 93-108.
14
D Mello, J.P.F., 2000. Anti nutritional factors and Mycotoxins. In Farm Animal Metabolism and Nutrition. Edited by JPF D Mello. Wallingford, Uk. CAB International. pp: 383-403.
15
Dawd, KY.; Musimba, NKR.; Ekaya, WN. and Farah, KO., 2003. The nutritional value of Ziziphus spina–christi for goat production among the pastoralists of Kalu district, South Wello, Ethiopia. African J. Range and Forage Sci. Vol. 20, No. 3, pp: 265-270.
16
Depommier, D., 1988. Ziziphus mauritiana Lam. Bois Forests Trop. Vol. 218, pp: 57-62.
17
FAO. 1997. Tree Foliage in Ruminant Nutrition. In: Animal Production and Health. ed. R.A. Leng. 139 p.
18
Frutose, P.; Hervas, G.; Giraldz, F.J. and Mantecon, A.R., 2004. Review, Tannins and ruminant nutrition. Spanish J. Agri. Res. Vol. 2, No. 2, pp: 191-202.
19
Givens, D.I.; Owen., E.; Axford R.F.E. and Omed, H.M., 2000. Forage evaluation in ruminant nutrition. CABI Publishing. pp: 113-134.
20
Gupta, RK., 1993. Multipurpose Trees for Agroforestry and Wastel and Utilization. Winrock Oxford 8 IBH series, International Science Publisher, New York. pp: 519-522.
21
Hagerman, A.E. and Butler, L.G., 1991. Tannins and lignins. In Herbivors: their interactions with secondary plant metabolites, Vol 1: The chemical participants. Edited by GA Rosenthal and MR Berenbaum. Academic Press, NY (USA), pp: 355-388.
22
Hiernaux, P.H.Y.; Cisse, M.I.; Diarra, L. and de Leeum, P.N., 1994. Fluctuations saissonieres de La feuillaison des arbres et des buissons saheiiens. Consequences pour la quantification des resources fourrageres. Revue d Elevage et do Medecine Veterinaire des Pays Tropicaux. Vol. 47, pp: 117-125. (Abstract)
23
Julkunen-Tiitto, R., 1985. Phenolic Constituents in the leaves of Northern Willows: Methods for the analysis of certain phenolics. J. Sci. Food Agri. Vol. 33, pp: 213-217.
24
Khan, N.A.; Habib, G. and Ullah, G., 2009. Chemical composition, rumen degradability, protein utilization and location response to selected tree leaves as substitute of cottonseed cake in the diet of dairy goat. Anim. Feed Sci.Technol. Vol. 154, pp: 160-168.
25
Leng R.A., 1990. Factors affecting the utilization of poor quality forage by ruminants particularly under tropical conditions. Nutr. Res. Rev. Vol. 3, pp: 277-303.
26
Lenga, R.A.; Jessop N. and Kanjanapruthipong, J., 1993. Control of feed intake and the efficiency of utilization of feed by ruminants. In Recent Advances in Animal nutrition in Australia. pp: 70-88.
27
Makaranga, M., 2002. The effect of feeding tannin ferrous rich browse diet to worm infected goats on crude protein digestibility and worm burden. A special project. Sokoine University of Agriculutre, Tanzania. 23 p.
28
Makkar, H.P.S. and Becker, K.,1998. Do tannins in leaves of trees and shrubs from African and Himalayan region differ in level and activity? Agroforest Sys. Vol. 40, pp: 59-68.
29
Makkar, H.P.S.; Borrowy, N.K. and Becker, K., 1992. Quantification of polyphenols in animal feedstuffs. Proceeding of the 15th International conference of group polyphenol, Lisboa, Prtugal.
30
Mangan, J.L., 1988. Nutritional effects of tannins in animal feeds. Nutr. Res. Rev.Vol. 1, pp: 206-231.
31
Martinez, T.F. and Moyano, F.J., 2004. Effect of tannin acid on in vitro enzymatic hydrolysis of some protein sources. J. Sci. Vol. 83, pp: 456-464.
32
McBrater, A.C.; Utley, P.R.; Lowrey, R.S. and Mc Cormick, A.,1983. Evaluation of peanut skins (Testa) as feed ingredient for growing-finishing cattle. J. Anim. Sci. Vol. 56, pp: 173-182.
33
Mc Dowell, R.E., 1972. Improvement of Livestock Production in Warm Climates. Freeman and Company, San Fransisco, California, USA.
34
Njidda, AA. and Ikhimioya, I., 2010. Correlation between chemical composition and in Vitro dry matter digestibility of leaves of semi-arid browses of north-eastern Nigeria. American Eurasian J. Agri. Environ. Sci. Vol. 9, No. 2, pp: 169-175.
35
Njidda, AA.; Olafadehan, OA. and Duwa, H., 2014. Effect of dietary inclusion of browse forage (Ziziphus mucronata) in a total mixed ration on performance of ankasa rams. Scholar J. Agri. Vet. Sci. Vol. 1, No. 4, pp: 235-241.
36
Norton, B.W. and Ahn, J.H., 1997. A comparison of fresh and dried Calliandra callothyrsus supplements for sheep given a basal diet of barley straw. J.Agri. Sci. Camb. Vol. 129, pp: 485-494.
37
Norton, B.W., 1994. Anti–nutritive and toxic factors in forage tree legumes. In Forage Tree Legumes in Tropical Agriculture. Edited by RC Gutteridg and HM Sheiton. Walling ford, Oxford: CAB International. pp: 202-215.
38
Okuda, T.; Yoshida, T. and Hatano, T., 1993. Classification of oligomeric hydrolysable tannins and specificity of their occurance in plants. Phytochemistry. Vol. 32, pp: 507-521.
39
Olsson, A. and Wellin- Berger, S., 1989. The potential of local shrubs as feed for livestock and the mineral content of some soils and some soil-links in central Tanzania. Swedish University of Agricultural Sciences. Developing Centres, Uppsala. Vol. 125, pp: 6-20.
40
Salem, A.Z.M.; Salem, M.Z.M.; El-Adawy, M.M. and Robinso. P.H., 2006. Nutritive evaluations. Anim. Feed Sci. and Technol.Vol. 127, pp: 251-267.
41
SAS. 2003. SAS/STAT Software: Changes and Enhancement through Release 6.12. SAS Institute Inc., Cary, NC. USA.
42
Schofield, P.; Mbugua, D.M. and Pell, A.N., 2001. Analysis of condensed tannins: a review. Anim. Feed Sci. and technol. Vol. 91, pp: 21-40.
43
Sena, L.P.; Vanderjagt, D.J.; Rivera, C.; Tsin, A.T.C.; Muhamadu, I.; Mahamaduo, O.; Millson, M.; Pastuszyn, A. and Glew, R.H.,1998. Analysis of nutritional components of eight famine foods of the Republic of Niger. Plant Foods for Human Nutr. Vol. 52, No. 1, pp: 17-30.
44
Silanikove, N.A.; Perevolotsky, A. and Provenza, F.D., 2001. Use of tannin – binding chemical to assay for their negative post ingestive effects in ruminants. Anim. Feed Sci. Technol. Vol. 91, pp: 69-81.
45
Topps, J.H., 1992. Potential composition and use of legume shrubs and trees as fodders for livestock in the tropics. J. Agri. Sci. Camb. Vol. 118, pp: 1-8.
46
Van Soest, P.J.; Robertson, J.D. and Lewis, B.A., 1991. Methods for dietary fibre, eutral detergent fibre and non starch polysaccharides in relation to animals nutrition. J. Dairy Sci. Vol. 74, pp: 3583-3597.
47
ORIGINAL_ARTICLE
اثر گاواژ عصاره آویشن شیرازی بر برخی از فراسنجههای خونی بره
این مطالعه با هدف بررسی اثر گاواژ عصاره آویشن بر برخی از فراسنجه های خونی در بره های نژاد فراهانی در مزرعه دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه اراک انجام شد. در این مطالعه تعداد 15 رأس بره ماده نژاد فراهانی در سه گروه به مدت چهل روز شامل: تیمار یک (شاهد): گاواژ آب مقطر، تیمار دو: گاواژ یک سی سی عصاره آویشن، تیمار سه: گاواژ دو سی سی عصاره آویشن. دو بار خونگیری از بره ها انجام شد و سپس فراسنجه های هماتولوژی و ایمنوگلوبولین G سنجش شد. داده ها با طرح کامل تصادفی آنالیز شدند. نتایج نشان داد که عصاره آویشن سبب افزایش گلبولهای سفید خون (0/01>p) و هم چنین افزایش سطح ایمنوگلوبولین جی (0/01>p) شد. آنزیم کبدی AST نیز پس از گاواژ عصاره آویشن به طور معنی داری کاهش یافت (0/05>p). به نظر میرسد مصرف عصاره آویشن در بره ها، می تواند سبب بهبود سیستم ایمنی در بره ها شود.
http://www.aejournal.ir/article_92907_8e83009f1a43ed53cde8f350b030a687.pdf
2019-07-23
77
84
بره
عصاره آویشن
فراسنجه خون
مهدی
خدایی
mmotlagh2002@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه اراک، اراک، ایران
LEAD_AUTHOR
مهدی
کاظمی بنچناری
mmotlagh2002@hotmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه اراک، اراک، ایران
AUTHOR
محمدحسین
مرادی
moradi.hosein@gmail.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه اراک، اراک، ایران
AUTHOR
Al-Harthi, M.A., 2004. Efficiency of utilizing some spices and herbs with or without antibiotic supplementation on growth performance and carcass characteristics of broiler chicks. Egyptian J Poultry Science. Vol. 24, pp: 869-899.
1
Al-Kassie, G.A.M., 2009. Influence of two plant extracts derived from thyme and cinnamon on broiler performance. Pakistan Veterinary Journal. Vol. 29, No. 4, pp: 169-173.
2
Amoozmehr, A. and Dastar, B., 2009. Effects of alcoholic extract of two herbs (garlic and thymus) on the performance and blood lipids of broiler chickens. Journal of Agricultural Sciences and Natural Resources. Vol. 16, No. 1, pp: 342-350.
3
Awaad, M.H.H.; Sahar, A.S.; Zouelfakar, S; Elshazly, O.A.; Afify M.A. and Shaheed, I.B., 2000. Immuno modulatory properties of inactivatedPropiobacteriumgranulosum (IM-104). 1: In non-immunosuppressed chickens. Journal Egyptian Veterinary Medecin Associaton. Vol. 60, pp: 137-148.
4
Benchaar, C.; Petit, H.V.; Berthiaume, R.; Ouellet, D.R.; Chiquette, J. and Chouinard, P.Y., 2007. Effects of essential oils on digestion, ruminal fermentation, rumen microbial populations, milk production, and milk composition in dairy cows fed alfalfa silage or corn silage. Journal of Dairy Science. Vol. 90, pp: 886-897.
5
Benchaar, C.; Calsamiglia, S.; Chaves, A.; Fraser, G.; Colombatto, D.; McAllister, T. and Beauchemin, K., 2008. A review of plant-derived essential oils in ruminant nutrition and production. Animal Feed Science and Technology. Vol. 145, No. 1, pp: 209-228.
6
Cardozo, P.W.; Calsamiglia, S.; Ferret, A. and Kamel, C., 2006. Effects of alfalfa extract, anise, capsicum, and a mixture of cinnamaldehyde and eugenol on ruminal fermentation and protein degradation in beef heifers fed a high-concentrate diet. Journal of Animal Science. Vol. 84, pp: 2801-2808.
7
Chaves, A.V.; Stanford, K.; Gibson, L.L.; McAllister, T.A. and Benchaar, C., 2008. Effects of carvacrol and cinnamaldehyde on intake, rumen fermentation, growth performance, and carcass characteristics of growing lambs. Animal Feed Science and Technology. Vol. 145, pp: 396-408.
8
Cornellus, C.E., 1980. Liver function, clinical biochemistry of domestic animals. London: Academic Press. pp: 230-242.
9
Distel, R.A.; Iglesias, M.R.; Arroquy, J. and Merino, J., 2007. A note on increased intake in lambs through diversity in food flavor. Applied Animal Behavior Science. Vol. 105, pp: 232-237.
10
El-shenawy, K.E.; Otteifa, A.M.; Ezzo, O.H. and Hegazy, M.A., 1999. Post-weaning reproductive activity of Barki ewes lambing in spring fed Nigella sativa oil seed meal. Assiut Veterinary Medical Journal. Vol. 40, pp: 292-299.
11
Faix, E.; Faioxva, Z.; Placha, L. and Koppel, J., 2009. Effect of Cinnamomum zeylanicum essential oil on antioxidative status in broiler chickens. Acta Veterinaria Brno. Vol. 78, pp: 411-417.
12
Fakoor, M.H.; Allameh, A.; Rasooli, I. and Mazaheri, M., 2007.Multiflora Boiss Antifungal effects of Zataria. and Thymus eriocalyx (Ronniger) Jalas essential oils on aflatoxin producing Aspergillus parasiticus. Iranian Journal of Medicinal and Aromatic Plants. Vol. 23, No. 2, pp: 269-277.
13
Ferreira, PMP., 2004. Atividade Larvicida do Extrato Aquoso de Moringa oleifera Lamarck contra Aedes aegypti Linnaeus: Identificação Parcial e Caracterização Toxicológica do Princípio Ativo. Monografia de Graduação em Ciências Biológicas, Fortaleza, Universidade Federal do Ceará. 70 p.
14
Ganjkhanlou, M.; Hozhabri, A.; Zali, A.; Emami, A. and Akbari Afjani, A., 2014. Effect of Fish Oil and Thyme Extract on Dry Matter and Nutrient Digestibility, Chewing Activity and Rumen Metabolites of Mahabadi Kids. Research on animal production. Vol. 5, No. 10, pp: 69-83.
15
Ghasemi, R.; Zarei M. and Torki, M., 2010. Adding medicinal herbs including garlic (Allium sativum) and thyme (Thymus vulgaris) to diet of hens and evaluating productive performance and egg quality characteristics. Animal Veterinary Science. Vol. 5, No. 2, pp: 151-154.
16
Grashorn, M.A., 2010. Use of phytobiotics in broiler nutrition-an alternative to in feed antibiotics. Journal of Animal and Feed Science. Vol. 9, pp: 338-347.
17
Greathead, H., 2003. Plants and plant extracts for improving animal productivity. Proc. Nutr. Soc. Vol. 62, pp: 279-290.
18
Grossi, A. and Lacetera, N., 2004. Administration of Thuya occidentalis in homeopathic dilution in goats vaccinated against bluetongue virus: a preliminary study. Journal of Animal and Feed Sciences. Vol. 13, pp: 593-596.
19
Imelouane, B.; Amhamdi, H.; Wathelet, J.P.; Ankit, M.; Khedid, K. and El Bachiri, A., 2009. Chemical composition and antimicrobial activity of essential intestine mucosa morphology, and meat yield of broilers. Journal of Applied Poultry Research. Vol. 16, pp: 555-562.
20
Jatav, V.; Khatrip, A.S. and Sharma, A., 2011. A Recent Phamacological trends of Glycryrrhiza glabra linn. International Journal of Phamaceutical frontier research IJPER. Vol. 1, No. 1, pp: 170-185.
21
Kheradmand Garmsir, A.; Zare Shahneh, A.; Jalali, S.M.A.; Nouri, H. and Afshar, M., 2014. Effects of dietary Thyme (Thymus vulgaris) and fish oil on semen Quality of miniature caspian Horse. Journal of Equine Veterinary Science. Vol. 34, pp: 1069-1075.
22
Kung, J.L.; Williams, P.R.; Schmidt, J. and Hu, W., 2008. A Blend of Essential Plant Oils Used as an Additive to Alter Silage Fermentation or Used as a Feed Additive for Lactating Dairy Cows. J of Dairy Science. Vol. 91, pp: 4793- 4800.
23
Mathivanan, R. and Kalaiarasi, K., 2007. Panchagavya and Andrographis panculata as alternatives to antibiotic growth promoters on haematological, serum biochemical parameters and immune status of broilers. Journal Poultry Science. Vol. 44, No. 2, pp: 198-204.
24
Mirzaei, F.; Prasad, S.; Dang, A.K. and Sehgal, J.P., 2011. Efficacy of polyherbal feed additives on nutrient digestibility, milk yield and composition of lactating crossbred goats. Indian J of Animal Sciences. Vol. 81, No. 8, pp: 886-890.
25
Mokhber Dezfouli, M.R.; Mohammadi, H.R.; Nadalian, M.G.; Hadjiakhoondi, A.; Nikbakht Borujeni, G.R.; Tajik, P.T. and Jamshidi, R., 2011. Influence of parenteral administration of chamomile extract on colostral IgG absorption in neonatal calves Matricaria recutita. International Journal of Veterinary Research. Vol. 5, No. 3, pp: 169-171.
26
Oh, H.K.; Sakai, T.; Jones M.B. and Longhurst, W.M., 1967. Effect of various essential oils isolated from Douglas Fir Needles upon sheep and deer rumen microbial activity. Applied Eenviron Microbiolgy. Vol. 15, pp: 777-784.
27
Rivera, E. and Hu, S., 2003.Ginseng and aluminium hydroxide act synergistically as vaccine adjuvants. Vaccine. Vol. 21, pp: 1149-1157.
28
Sancho, B.; Méndez, L. and Almela, E., 2012. Effects of dietary rosemary extract on lamb spoilage under retail display conditions. Meat Science. Vol. 90, pp: 579-583.
29
Sarica, S.; Ciftci, A.; Demir, E.; Kilincand Yıldırım, Y., 2005. Use of an antibiotic growth promoter and two herbal natural feed additives with and without exogenous enzymes in wheat based broiler diets. South African Journal Animal Science. Vol. 35, pp: 61-72.
30
Savoini, G. and Bontempo, V., 2002. Alternative antimicrobials in the nutrition of postweaning piglets. Veterinary Record. Vol. 151, No. 19, pp: 577-580.
31
Schranner, I.; Wurdinger, M.; Klumpp, N.; Lösch, U. and Okpanyi, S.N., 1989. Beeinflussung der aviären humoralen immunreaktionen durch infuex und Echinacea angustifolia extract. J of Veterinary Medicine. Vol. 36, pp: 353-364.
32
Seung-Joo, L. and Katumi, U., 2005. Department of food science and technology, Dongguk University, Identification of volatile components in basil (Ocimum basilicuml) and thyme leaves (Thymus vulgaris L) and their antioxidant properties. pp: 37-137.
33
Shaver, R.D. and Tassoul, M.D., 2008. Essential oils as dietary supplements for dairy cows. Mid- Atlantic Nutrition Conference, Baltimore, MD.
34
Simitzis, P.E.; Deligeorgis, S.G.; Bizelis, J.A.; Dardamani, A.; Theodosios, I. and Fegeros, K., 2008. Effect of dietary organo oil supplementation on lamb meat characteristics. Meat Science. Vol. 79, pp: 217-223.
35
Talebzadeh, R.; Alipour, D.; Saharkhiz, M.J.; Azarfar, A. and Malecky, M., 2012. Effect of essential oils of Zataria multiflora on in vitro rumen fermentation, protozoa population, growth and enzyme activity of anaerobic fungus isolated from Mehraban sheep. Animal Feed Science and Technology. Vol. 172, pp: 115-124.
36
Tassoul, M.D. and Shaver, R.D., 2009. Effect of a mixture of supplemental dietary plant essential oils on performance of periparturient and early lactation dairy cows. Journal of Dairy Science. Vol.92. pp:1734-1740.
37
Tollba, A.A.H.; Shabaan, S.A.M. and Abdel-Mageed, M.A.A., 2010. Effect of using aromatic herbal extract and blended with organic acids on productive and physiological performance of poultry 2- The growth during cold winter stress. Egyptian Poultry Science. Vol. 30, No. 1, pp: 229-248.
38
Vakili, A.R.; Khorrami, B.; DaneshMesgaran, M. and Parand, E., 2013. The effects of thyme and cinnamon essential oils on performance, rumen fermentation and blood metabolites in Holstein calves consuming high concentrate diet. Asian Australas Journal of Animal Science. Vol. 26, No. 7, pp: 935-944.
39
Yang, W.Z.; Ametaj, B.N.; He, M.L.; Benchaar, C. and Beauchemin, K.A., 2010. Cinnamaldehyde in feedlot cattle diets: intake, growth performance, carcass characteristics, and blood metabolites. Journal of Animal Science. Vol. 88, pp: 1082-1092.
40
Zarei, M.A.; Eftekhary, H. and Aqhababa, H., 2014. Effect of hydroalcoholic extract of Zataria multiflora Bioss on serum lipids levels in high cholesterol diet fed Rats. Quarterly of the Horizon of Medical Sciences. Vol. 19, No. 4, pp: 218-223.
41
Zi, X.; Mukhtar H. and Agarwa, R., 1997. Novel cancer chemopreventive effects of a flavonoid antioxidant silymarin. Biochemical and Biophysical Research Communications. Vol. 239, pp: 334-339.
42
ORIGINAL_ARTICLE
شاخص های نژادی، زیست سنجی و تغذیه ای بز خلخالی در زیستگاه بومی آن
این مطالعه در زیستگاه بومی و منطقه گسترش نژادی بز خلخالی با هدف شناسایی صفات نژادی، تغذیه ای و شاخص های ظاهری و اندازه های بدنی انجام گردید. برای اجرای این پژوهش، در ابتدا مناطق پراکنش نژادی بز خلخالی مشخص گردیده، از سه بخش مرکزی، خورش رستم و امامرود شهرستان خلخال به طور تصادفی در مجموع 24 روستا و از هر روستا 3 گله انتخاب و مطالعه گردید. روش جمعآوری اطلاعات به شیوه پرسشنامهای، مشاهده و اندازهگیری بود. نتایج نشان داد که 79/3 درصد از گلهداران بهروش روستایی و 20/7 درصد به روش نیمه عشایری با میانگین تعداد 7/1 نفر در هر خانواده گلههای خود را پرورش می دهند. میانگین درصد بز و بزغاله در ترکیب گلهها 44/5 درصد، رنگ غالب بز خلخالی سیاه و ابلق (سیاه وسفید)، هرکدام با میانگین 34/3 درصد بود. اغلب بزهای خلخالی دارای شاخ بوده و تنها 26/8 درصد از آن ها بی شاخ بودند. ضرایب همبستگی بین ناحیه های اصلی بدن شامل ارتفاع جدوگاه، دور سینه و دور شکم در هر دو بز ماده بالغ و چپش ماده بالای 40 درصد بود. میانگین مدت زمان چرای بزها از مراتع و پسچر مزارع 8/3 ماه در سال با میانگین 1/82 دفعه تغذیه دستی در روز بود. زمان نگه داری بزها در آغل 3/7 ماه در سال و تعداد دفعات تغذیه دستی در آغل به طور میانگین 4/2 دفعه بود. میانگین علوفه و کنسانتره مصرفی روزانه بزها به ترتیب 0/66 و 0/25 کیلوگرم برای هر راس بز بالغ بود. تلفات بزها بیش تر در اثر عارضه کیسه صفرا بوده و اسهال از بیماری های رایج آن ها می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_92953_071f4d2a62b9a4718b6b2a648f375b54.pdf
2019-07-23
85
94
بزخلخالی
نژاد
زیست سنجی
تغذیه
اکبر
ابرغانی
a.abarghani@yahoo.com
1
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان اردبیل(مغان)،سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اردبیل، ایران
AUTHOR
محمود
صحرایی
m.sahraei2009@gmail.com
2
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان اردبیل(مغان)،سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اردبیل، ایران
LEAD_AUTHOR
اسماعیلیراد، ا.، 1377. وضعیت پرورش و نگه داری بزهای نجدی، سانن و سانن × نجدی. موسسه تحقیقات علوم دامی کشور.
1
حسینی، ع.م.، 1383. پرورش بز. انتشارات کیمیاگستر. تبریز. 134 صفحه.
2
سعادت نوری، م.، 1370. پرورش دام های شیری (گاومیش و بز). انتشارات اشرفی، تهران. 366 صفحه.
3
عزتپور، م.، 1382. پرورش گوسفند و بز بومی ایران. انتشارات مؤلف، ساری. 183 صفحه.
4
مموئی، م.، 1376. پرورش و نگه داری بزهای شیری. انتشارات موسسه نشر جهاد، تهران. 123 صفحه.
5
ولیزاده، ر.، 1374. پرورش عملی بز. انتشارات فرهنگ جامع، تهران. 112 صفحه.
6
هاشمی، م.، 1375. پرورش بزهای شیری. انتشارات دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد. 125 صفحه.
7
توکلیان، ج.، 1378. نگرشی بر ذخائر ژنتیکی دام و طیور بومی ایران. موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، کرج، ایران.
8
قرهداغی، ع.ا.؛ اسدزاده، ن.؛ بروفه، ک.؛ تیموری، ع.ر.؛ رضایی، م.؛ صادقیپناه، ا.ح.؛ عبادی، ز.؛ غلامی، ح.؛ فضایلی، ح.؛ منصوری، ه. و ولایتی، ع.، 1388. پروژه راهبردی گوشت. موسسه تحقیقات علوم دامی. وزارت جهاد کشاورزی. 45 صفحه.
9
FAO. 2014. Statistical yearbook, Asia and the Pacific Food and Agriculture. Bankok.
10
Fernández, H.; Hughes, S.; Vigne, J.D.; Helmer, D.; Hodgins, G.; Miquel, C.; Hänni, C.; Luikart, G. and Taberlet, P., 2006. Divergent mtDNA lineages of goats in an Early Neolithic site, far from the initial domestication areas. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. Vol. 103, No. 4, pp: 15375-15379.
11
Janssens, S. and Vandepitte, W., 2004. Genetic parameters for body measurements and linear type traits in Belgian Blue du Maine, Suffolk and Texel sheep. Small Ruminant Research. Vol. 54, pp: 13-24.
12
Hetherington, L. and Matthews, G., 1992. All about goats. Farming press, kingdom. 178 p.
13
Mahgoub, O. and Lu, C.D., 1998. Growth, body composition and carcass tissue distribution in goats of large and small sizes. Small Ruminant Research. Vol. 27, No. 3, pp: 267-278.
14
Morand-Fehr, P.; Boutonnet, J.P.; Devendra, C.; Dubeuf, J.P.; Haenlein, G.F.W.; Holst, P.; Mowlem, L. and Capote, J., 2004. Strategy for goat farming in the 21st century. Small Ruminant Research. Vol. 51, pp: 175-183.
15
Payne, W.J.A. and Wilson, R.T., 1999. An Introduction to Animal Husbandry in the Tropics. Long man Scientific and Technical United States, New York, Longman Scientific and Technical, USA.
16
Porter, V. and Tebbit, J., 1996. Goats of the world. Farming Press Miller Freeman Professional Ltd. UK Freemah.LT5. pp; 6-10.
17
Salehi, M.; Kadim, I.; Mahgoub, O.; Negahdari, S.H. and Eshraghi, R.S., 2014. Effects of type, sex and age on goat skin and leather characteristics. Animal Production Science. Vol. 54, pp: 638-644.
18
Wikipedia. 2014. https://en.wikipedia.org/wiki/2014.
19
Zeder, M.A., 2008. Domestication and early agriculture in the Mediterranean Basin: Origins, diffusion, and impact. Proc Natl Acad Sci U S A. Vol. 105, No. 33, pp: 11597-11604.
20
Zhou, H.M.; Allain, D.; Li, J.Q.; Zhang, W.G. and Yu, X.C., 2003 Effects of non-genetic factors on production traits of Inner Mongolia cashmere goats in China. Small Ruminant Research. Vol. 47, No. 1, pp: 85-89.
21
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی روند انتشار گاز نیتروس اکساید حاصل از پرورش دام های اهلی در ایران
تغییرات اقلیمی منتج شده از انتشار گازهای گلخانه ای، زندگی انسان ها را به خطر انداخته است. یکی از این گازهای آلاینده اتمسفر، نیتروساکساید می باشد که قدرت حفظ گرمای آن (با طول عمر حدود 165 سال)، 310 برابر گاز دی اکسایدکربن، می باشد. لذا هدف این پژوهش بررسی میزان تولید گاز نیتروس اکساید ناشی از پرورش دام های اهلی در ایران، بود. آمار تعداد دام های اهلی در یک دهه گذشته، از وزارت جهادکشاورزی، اخذ شدند. دامهای اهلی به پنج تیمار آزمایشی شامل: گروه گاوها، گروه دامهای سبک، گروه دامهای سنگین، گروه طیورصنعتی و گروه سایر ماکیان تقسیم بندی شدند. سپس با استفاده از نرم افزار IPCC (در سطح یک) میزان انتشار گاز نیرواکساید ناشی از پرورش دامهای اهلی به دست آمد. داده های آزمایشی با روش طرح کاملاً تصادفی در نرم افزارSAS ، تجزیه و تحلیل شدند. کواریانس میزان انتشار در بین سالهای تحقیق، با روش اندازهگیری تکرار در زمان، مورد ارزیابی قرار گرفت. میزان انتشار گاز نیتروس اکساید در سال 1396 به ترتیب تیمارهای مذکور 6/34، 79/87، 1/26، 1452/71 و 7/15 میلیون تن به دست آمد. میزان انتشار کل گاز نیتروس اکساید، کل خوراک مصرفی و کل تولیدات دامی طی دهه گذشته، به ترتیب درحدود 128/13 گیگاگرم، 605/72 میلیون تن و 118/37 میلیون تن بود. کواریانس انتشار این گاز در بین سالهای آزمایش (متغییر مستقل)، از نوع بدون ساختار و ناهمگن بود. به نظر می رسد بیش ترین گروهی که باعث انتشار گاز نیتروس اکساید می شوند، گروه طیور صنعتی می باشند. لذا میبایستی در جهت بهینه سازی مدیریت کود این پرندگان، توجه علمی ویژهای، صورت گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_92955_6d301836dcda958d374b2e74b37c51cc.pdf
2019-07-23
95
104
تغییرات اقلیمی
گازهای گلخانه ای
نیتروس اکساید
دام های اهلی
امیر رضا
صفایی
amirrezasafaei@gmail.com
1
موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
علیرضا
آقاشاهی
aghashahimobin@gmail.com
2
موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
AUTHOR
مصطفی
جعفری
amirrezasafaei@yahoo.com
3
موسسه تحقیقات جنگل ها و مراتع کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
هوشنگ
لطف الهیان
houlotf@yahoo.com
4
موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
AUTHOR
آمارنامه کشاورزی. 1390-1395. انتشارات مرکز فناوری اطلاعات و ارتباطات وزارت جهاد کشاورزی.
1
اشراقی، ه.، 1393. مروری بر نحوه محاسبه موجودی انتشار گازهای گلخانه ای. نشت علمی محاسبه موجودی انتشار گازهای گلخانه ای سازمان حفاظت محیط زیست. تهران. ایران.
2
انصاری، ن.؛ گلستانیان، ک. و بهرامی، م.،a 1397. بررسی تکنیک پس نگری در بافتار توسعه پایدار با نگاهی به سناریوهای کاهش انتشار در کشورهای هند، ژاپن و آلمان. همایش چهارمین کنفرانس بین المللی یافته های نوین در علوم کشاورزی، منابع طبیعی و محیط زیست. تهران. ایران.
3
انصاری، ن.؛ گلستانیان، ک. و بهرامی، م.، b 1397. کاربرد تکنیک های آینده پژوهی در فضای پایدار حل مسأله تغییر اقلیم. همایش چهارمین کنفرانس بین المللی یافته های نوین در علوم کشاورزی، منابع طبیعی و محیط زیست. تهران. ایران.
4
جعفری، م.، 1393. آسیب پذیری و برنامه های تطبیق و سازگاری در جنگل ها و مراتع. سومین گزارش ملی تغییر آب و هوا، دفتر ملی تغییر آب و هوا. 110 صفحه.
5
دهقان، ا.، 1393. سومین گزارش ملی تغییرات آب و هوا. بخش دوم: فهرست موجودی گازهای گلخانه ای در کشور. زیربخش: کشاورزی. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. 25 صفحه.
6
زمانی، پ.، 1389. طرح های آماری در علوم دامی. انتشارات دانشگاه بوعلی سینا. همدان. 630 صفحه.
7
صفایی، ا.م.؛ تربتی نژاد، ن.م.؛ منصوری، ه. و زره داران، س.، 1393. اثرات افزودن پلی اتیلن گلیکول بر تولید گاز متان در شکمبه، قابلیت هضم و انرژی قابل متابولیسم تفاله های انگور و لیموترش. مجله پژوهش های تولیدات دامی. دانشگاه ساری. سال 5، شماره 9، صفحات 83 تا 95.
8
صفایی، ا.م.؛ صادقی پناه، ح. و مشیرغفاری، ف.، 1395. بررسی مزایا و معایب تولید بایوگاز از کود دامی. مجموع مقالات سومین کنگره علمی پژوهشی توسعه و ترویج علوم کشاورزی، منابع طبیعی و محیط زیست ایران.
9
محرری، ع.، 1382. نقش حیوانات اهلی در تولید گاز N2O به عنوان یکی از گازهای گلخانه ای. سومین کنفرانس منطقه ای و اولین کنفرانس ملی تغییر اقلیم. اصفهان. ایران.
10
مرادی، ا. و امنیان، م.، 1391. میزان انتشار گازهای گلخانه ایران در سال 1389. نشریه نشاء علم. سال 3، شماره 1، صفحات 55 تا 59.
11
مسافری، ص.؛ اتحاد، س. و کوشافر، ح.،1390. بررسی نیتروژن اورهای شیر با پارامترهای باوری در گاوهای شیری شهرستان تبریز. مجله دامپزشکی دانشکده دامپزشکی دانشگاه آزاد تبریز. دوره 5، شماره 2، صفحات 1233 تا 1245.
12
Asman, W.A.H.; Sutton, M.A. and Schjoerring, J.K., 1998. Ammonia: emission, atmospheric transport and deposition. New Phytol. Vol. 139, pp: 27-48.
13
Glenn, J.C.; Gordon, T.J. and Florescu, E., 2017. State of the Future: American Council for the United Nations University, Washington, DC, USA.
14
Guo, K.; Russek-Cohen, E.; Varner, M.A. and Kohn, R.A., 2004. Effects of Milk Urea Nitrogen and Other Factors on Probability of Conception of Dairy Cows. Journal of Dairy Science. Vol. 87, No. 6, pp: 1878-1885.
15
IPCC. 1997. Revised 1996 IPCC Guidelines for National Greenhouse Inventories. Houghton, J.T.; Meira Filho, L.G.; Lim, B.; Tréanton, K.; Mamaty, I.; Bonduki, Y.; Griggs, D.J. and Callander, B.A., (Eds).
16
IPCC. 2006. Guidelines for National Greenhouse Gas Inventories. Chapter 10: Emissions from Livestock and Manure Management. Volume 4: Agriculture, Forestry and Other Land Use. Intergovernmental Panel on Climate Change (IPCC), IPCC/OECD/IEA, Paris, France.
17
Monteny, G.J. and Erisman, J.W., 1998. Ammonia emissions from dairy cow buildings: A review of measurement techniques, influencing factors and possibilities for reduction. Neth. J. Agric. Sci. Vol. 46, pp: 225-247.
18
Monteny, G.J.; Groesetein, C.M. and Hilhorst, M.A., 2001. Interactions and coupling between emissions of methane and nitrous oxide from animal husbandry. NutrientCycling in Agroecosystems. Vol. 60, pp: 123-132.
19
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تنوع زیستی پرندگان آبزی و کنار آبزی زمستان گذران تالاب های پلدختر
با توجه به موقعیت و شرایط اکوسیستم های تالابی در سطح جهان، بسیاری از گونه های مختلف پرندگان از لحاظ اکولوژیکی وابسته به تالاب ها بوده و از طریق سازش های مختلف از این اکوسیستم های منحصربه فرد به عنوان یک زیستگاه مناسب و حائز اهمیت بهره برداری می نمایند. از این رو بررسی تغییرات تنوع و نوسانات جمعیتی پرندگان آبزی در سال های مختلف می تواند به عنوان یک شاخص زیستی نشان دهنده وضعیت سلامت یا وجود تهدیدات موجود در اکوسیستم های تالابی باشد. در این پژوهش جهت بررسی تنوع زیستی پرندگان آبزی و کنار آبزی زمستان گذران تالاب های پلدختر در سال های 1394- 1388 از شاخص های تنوع گونه ای (شانون- وینر و عکس سیمپسون )، غنای گونه ای (شاخص مارگالف)، یکنواختی گونه ای (شاخص های اسمیت- ویلسون و غالبیت سیمپسون) و برای تشابه بین گونه ای پرندگان در سال های مختلف از شاخص موریستا استفاده گردید. در طی دوره آماری مورد بررسی مجموعاً تعداد 16986 پرنده از 6 راسته، 14 تیره و 43 گونه در تالاب های پلدختر شناسایی شده اند. تراکم پرندگان در سطح تالاب های پلدختر 52/9 و از نظر زیستگاه 58 درصد از گونه ها کنار آبزی و 42 درصد آبزی می باشند. نتایج بررسی شاخص های تنوع زیستی پرندگان تالاب های پلدخترنشان داد که سال 1388 کم ترین و سال 1391 بیش ترین تنوع گونه ای، سال 1392 بیش ترین و سال 1388 کم ترین میزان یکنواختی گونه ای و سال 1393 بیش ترین و سال 1388 کم ترین میزان غنای گونه ای پرندگان را دارا بوده اند. براساس شاخص تشابه موریستا، بیش ترین شباهت گونه ای جامعه پرندگان تالاب های پلدختر مربوط به سال های 1391 با 1393 به میزان تشابه 1 و کم ترین میزان تشابه گونه ای در سال های 1394 با 1390 به میزان تشابه 0/79 می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_92958_2367645886dd845acd36892121b10182.pdf
2019-07-23
105
114
تنوع زیستی
پرندگان آبزی و کنار آبزی
تالاب
پلدختر
مهدی
مهدی نسب
mehdi_4531@yahoo.com
1
باشگاه پژوهشگران جوان، واحد خرم آباد، دانشگاه آزاد اسلامی، خرم آباد، ایران
LEAD_AUTHOR
اداره کل محیط زیست استان لرستان. 1396. داده های خام سرشماری پرندگان تالاب های شهرستان پلدختر 1394- 1388.
1
احمدپور، م.؛ سینکاکریمی، م.ح.؛ قاسم پور، س.م. و احمدپور، م.، 1389. بررسی پاییزه تغییرات تنوع و تراکم پرندگان آبزی و کنارآبزی دامگاه های سه گانه تالاب بین المللی سرخرود. مجله تالاب. سال 2، شماره 6، صفحات 33 تا 42.
2
اعظمی، ج.؛ سیدقاسمی، س.؛ زمانی، ر. و محمودی، ا.، 1396. بررسی ساختار اکولوژیکی (فراوانی، غنا، یکنواختی، غالبیت، تشابه و تنوع) پرندگان استان گلستان در بازه زمانی پنج ساله (1394- 1390). مجله زیست شناسی جانوری تجربی. سال 6، شماره 1، پیاپی 21، صفحات 123 تا 137.
3
بهادری فر،م.؛ بهروزی راد، ب. و کرمی راد، آ.، 1389. مقایسه تراکم و تنوع پرندگان آبزی زمستان گذران دریاچه بزنگان و سد شهید یعقوبی در استان خراسان رضوی (نیمه دوم سال 1386). مجله تالاب. سال 2، شماره 5، صفحات 21 تا 27.
4
بهداروند، م.؛ عباسی، س. و کاظمی نژاد، ا.، 1394. بررسی فون پرندگان آبزی و کنارآبزی منطقه حفاظت شده دز در استان خوزستان. فصلنامه اکو بیولوژیکی تالاب. سال 6، شماره 23، صفحات 77 تا 86.
5
بهروزی راد، ب. و حسن زاده کیابی، ب.، 1387. شناسایی و مقایسه فصلی تنوع و تراکم پرندگان آبزی تالاب های بین المللی کلاهی و تیاپ در تنگه هرمز. مجله علوم محیطی. سال 5، شماره 3، صفحات 113 تا 126.
6
پروانه، ب. و مهدی نسب، م.، 1391. نگرشی به آسایش حرارتی تالاب های شهرستان پلدختر در جهت توسعه گردشگری. فصلنامه جغرافیایی فضای گردشگری. سال 2، شماره 5، صفحات 71 تا 90.
7
خان پور، ف.؛ جعفری نژاد، م. و باقرزاده کریمی، م.، 1391. بررسی روند احیاء و بازسازی تالاب های بین المللی آلاگل، آلماگل و آجی گل. فصلنامه علمی محیط زیست (ویژه نامه تالاب). شماره 53 و 54. صفحات 21 تا 29.
8
طیبعی، ا. و شریفی، ر.، 1393. بررسی تنوع گونه ای پرندگان آبزی و کنار آبچر مهاجر زمستان گذران در زیستگاه های تالابی سواحل بوشهر. فصلنامه زیست شناسی جانوری. سال 7، شماره 1، صفحات 55 تا 66.
9
طیبعی، ا.؛ ابراهیمی، ن. و بهمنی، ن.،1393. بررسی تنوع گونه ای پرندگان آبزی و کنار آبچر زمستان گذران تالاب بامدژ استان خوزستان. فصلنامه اکوبیولوژیکی تالاب. سال 6، شماره 19، صفحات 31 تا 46.
10
طیبعی، ا. و نصیری، م.، 1392. بررسی تنوع گونه ای پرندگان آبزی و کنار آبچر مهاجر زمستان گذران تالاب بین المللی ارژن در استان فارس. فصلنامه زیست شناسی جانوری. سال 6، شماره 1، صفحات 29 تا 40.
11
عاشوری، ع. و وارسته مرادی، ح.، 1393. بررسی تنوع گونه ای پرندگان آبزی و کنارآبزی مهاجر زمستان گذران در تالاب بین المللی انزلی. فصلنامه اکوبیولوژیکی تالاب. سال 6، شماره 20، صفحات 55 تا 66.
12
قاسمی، م. و قاسمی، ص.، 1396. بررسی درصد فراوانی و تنوع زیستی پرندگان زمستان گذران در مناطق تالابی شرق استان هرمزگان. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 3، صفحات 103 تا 116.
13
کریمی، س.؛ وارسته مرادی، ح. و قدیمی، م.، 1391. مطالعه تغییرات شاخص های تنوع زیستی جامعه پرندگان در تیپ های پوششی متفاوت جنگل شصت کلاته گرگان. مجله حفاظت و بهره برداری از منابع طبیعی. جلد 1، شماره 1، صفحات 1 تا 18.
14
مهدی نسب، م. و میرزایی، ر.، در حال چاپ. تالاب ها با تاکید بر ارزش های زیست محیطی و ژئوتوریستی تالاب های 11 گانه پلدختر.
15
نگارش، ح.؛ پروانه، ب. و مهدی نسب، م.، 1392. امکان سنجی توسعه گردشگری تالاب های پلدختر براساس مدل تحلیلی SWOT. فصلنامه مطالعات برنامه ریزی سکونت گاه های انسانی (چشم انداز جغرافیایی). سال 8، شماره 22، صفحات 1 تا 13.
16
یزدان داد، س.، 1390. بررسی تغییرات تنوع و فراوانی پرندگان در اکوسیستم های آبی استان خراسان رضوی. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 2، شماره 1، صفحات 45 تا 58.
17
Amat, J.A. and Green, A.J., 2010. Waterbirds as Bioindicators of environmental conditions. Conservation monitoring in freshwater habitat, a practical guide and case studies, Edited by Hurford, C.; Schneider, M. and Cown, L., Springer Dordrecht Heidelberg London New yourk. 187 p.
18
Baldi, A. and kisbendek, T., 1999. Species-specific distribution of reed-nesting passering across reed-bed edges: Effects of spatial scale and edge type. Acta Zoologica academica scientiarum hungarica. Vol. 45, No. 2, pp: 97-114.
19
Barnes, B.V.; Pregitzer, K.S. and Spies, T.A., 1998. Ecological forest site. Journal forest. Vol. 80, pp: 493- 498.
20
Blendinger, P.G., 2005. Abundance and diversity of small bird assemblages in the Monte desert, Argentina. J. Arid Environ. Vol. 61, No. 4, pp: 567-587.
21
Defilippo, L., 2003. Survey of avian population, distribution, and diversity in a variety of habitats at UNDERC. Department of Biological Sciences, University of Notre Dame Environmental Research Center.
22
Evans, M.I., 1994. important brid areas in the middle east. Birdlife international inc.
23
Gotelli, N.J. and Colwell, R.K., 2011. Quantifying biodiversity: proceduresand pitfalls in the measurement andcomparison of species richness. Ecology Letters. Vol. 4, pp: 379-391.
24
Iranian Birds Register Committee. 2017. List of Birds of Iran. Accessible on the site: http://www.iranbirdrecords.ir.
25
IUCN. 2016. The Redlist of Birds. http://datazone. Birdlife. Org.
26
Krebs, C.J., 1999. Ecological Methodology, Second Edition, Addison- Welsey Longman Educational Publishers, Inc New York. 620 p.
27
Nick, R., 2003. Planting wetlands and dam, a practical guide to wetland design construction and propagation. 4th Edition, Published by Landlinks Press, Collinwood, Australia. 22 p.
28
Roberts, N.J., 2008. Structural and geologic controls on Gigantic (1GM) landslides in carbonate sequences: casestudies from the Zagros Mountains, Iran and Rocky Mountains, Canada, a thesis presented to the university of Waterloo in fulfillment of the thesis requirement for the degree of Master of Science in Earth Sciences, Ontario, Canada.
29
Seaby, R. and Henderson, P., 2006. Species Diversity and Richness. (Vresion 4). Pisces Conservation Ltd., Lymington, England.
30
Scott, D.A. and Adhami, A., 2006. An updated checklist of the birds of Iran. Podoces. Vol. 1, pp: 1-16.
31
Torres, R., 1995. Waterfowl community Structure of laguna santo Domingo (Cordoba) during an annual cycle. Rev. ASOC. SCI. litor. St. Tome. Vol. 26, No. 1, pp: 33-40.
32
Watkinson, A.R. and Sutherland, W.J., 1995.Source, sinks and pseudo-sinks. Journal of Animal cology. Vol. 64, pp:126-130.
33
ORIGINAL_ARTICLE
مدل سازی مطلوبیت زیستگاه سه گونه کلیدی در زیستگاه های جنگلی با استفاده از مدلHEP (مطالعه موردی: مناطق جنگلی مازندران)
زیستگاه اصلی ترین عامل زندگی حیات وحش جانوری و زندگی گیاهی می باشد که حفاظت از آن برای تداوم توسعه پایدار ضروری است. مدل سازی زیستگاه می تواند یک برآورد در مقیاس وسیع از مطلوبیت زیستگاه گونه های حیات وحش بدون نیاز به جمع آوری اطلاعات از جزئیات ویژگی های فیزیولوژیک و رفتاری جانوارن در اختیار بگذارد. بنابراین بررسی و ارزیابی دقیق زیستگاه ها نیازی مبرم است. پارامترهای موثر در 4 زیستگاه جنگلی شمال کشور، قادیکلا، آب بندان کش، اروست، لاجیم برای تعیین مطلوبیت با مدلHEP مورد مطالعه قرار گرفته است این مدل از روش های ارزیابی زیستگاه به صورت کمی سازی است و با کم ترین داده ها می توان به نتیجه مطلوب رسید. بعد از مطالعات کتابخانه ای و بررسی محیطی براساس شواهد به دست آمده، 3 گونه کرم شب تاب (Lampyris noctiluca)، حشره خور خزری (Shrew caspian) و باز (Accipiter gentilis) به عنوان شاخص برای مطالعه زیستگاه انتخاب شدند. مرحله بعد مدل SI برای دو گونه حشره خور خزری و باز با استفاده از فرمول های معتبر موجود تهیه و برای کرم شب تاب با توجه به این که فرمول مشخصی در تحقیقات سایر محققان وجود نداشت، در ایستگاه های منتخب اقدام به تله گذاری به صورت ترانسکت شد. مطلوبیت زیستگاه با محاسبه شاخص مطلوبیت زیستگاه یا HSI به دست آمد. نتایج نشان می دهد هر 4 ایستگاه از مطلوبیت نسبتاً مناسبی برخوردار بوده اند. در حالت کلی و محاسبه میانگین میزان مطلوبیت در 4 ایستگاه، سه ایستگاه آب بندان کش، اروست و لاجیم میزان یکسانی از مطلوبیت، با مقدار 0/67 و 0/68 برخوردار هستند. اما ایستگاه قادیکلا با میزان 0/87 دارای بیش ترین میزان مطلوبیت بوده است.
http://www.aejournal.ir/article_93015_4ab8bc364a49a4e87185be43882429a3.pdf
2019-07-23
115
124
ارزیابی
زیستگاه جنگلی
شاخص مطلوبیت
مدل HEP
کاملیا
علوی
camelia.alavi@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه اردکان، یزد، ایران
LEAD_AUTHOR
سیده عالمه
صباغ
s.a.sabbagh72@gmail.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه اردکان، یزد، ایران
AUTHOR
امیدی، م.؛ کابلی، م.؛ کرمی، م.؛ سلمان، آ. و حسن زاده کیابی، ب.، 1389. مدل سازی مناسب بودن زیستگاه های لئوپارد فارسی (Panthera pardus saxicolor) با روش تجزیه و تحلیل فاکتورهای محیط زیست در پارک ملی کلاه قاضی استان اصفهان. مجله علوم و فنآوری محیط زیست. دوره 6، شماره 82، صفحات 642 تا 693.
1
بختیاری، س.، 1396، اطلس جامع گیتاشناسی (راهنمای کامل جهان امروز ). گیتاشناسی، تهران. صفحات 82 تا 85.
2
حسینی، س.؛ ریاضی، ب.؛ شمس اسفندآباد، ب. و نادری، آ.، 1396. ارزیابی مناسبات زیستگاه Capra aegagrus در استان گلستان. مجله محیط زیست جانوری. دوره 2، شماره 9 ، صفحات 9 تا 16.
3
خلیلی، ف.؛ ملکیان، م.؛ رجایی، ن. و همامی، م.، 1395. ارزیابی زیستگاه سنجاب ایرانی (Sciurus anumalus) در منطقه جنگلی سروک در استان کهگیلویه و بویراحمد. بوم شناسی کاربردی. سال 5، شماره 4، صفحات 15 تا 24.
4
سلامتان، ص. و آقابابایی، م.، 1391. ارزیابی زیستگاه پارک ملی کلاه قاضی با استفاده از روش هپ. کنفرانس ملی راهکارهای دستیابی به توسعه پایدار. تهران. وزارت کشور.
5
سلمان ماهینی، س.، 1373. ارزیابی محیط زیست در محیط زیست در منطقه تورانی. پایان نامه کارشناسی ارشد، گروه ارزیابی محیطی. دانشگاه تهران. 45 صفحه.
6
شعاعی، آ.؛ گلی پور، م.؛ رضایی، ه. و ببرستانی، ی.م.، 1396. ارزیابی پذیرش زیستگاه Panthera pardus saxicolor با روش پس زمینه آنتروپی، Maxent در پارک ملی تاندور در تابستان و پاییز. مجله محیط زیست جانوری. دوره 2، شماره 9، ، صفحات 21 تا 30.
7
عرفانیان،ب.؛میرکریمی،س.ه.؛سلمان ماهینی،آ.س.و رضایی، ه.ر.ا.، 1392. مناسب بودن موجودیت زیستگاه مدل سازی برایPanthera pardus saxicolor در پارک ملی گلستان ایران. مجله زیست شناسی حیات وحش. دوره 2، شماره 69، صفحات 630 تا 632.
8
عمانی، س.، 1389.ارزیابی تناسب زیستگاه Gazella bennettii در منطقه شکارممنوع سرخ در زابل در پاییز و زمستان. پایان نامه کارشناسی ارشد محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات خوزستان. 68 صفحه.
9
کرمی، م.ریاضی، ب. و کلانی، ن.، 1385. ارزیابی زیستگاه کفتار راه راه ایرانی در پارک ملی خجیر و ارائه مدل مطلوبیت با کمک روش HEP. علوم محیطی. دوره 3. شماره 11. ص 77-86.
10
کرمی، پ.، 1393. مدل سازی مناسبات زیست محیطی منطقه شکار Subgutturosain gharaviz subgutturosa با روش تجزیه و تحلیل عامل فیزیکی (ENFA). پایان نامه کارشناسی ارشد محیط زیست. دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی. 121 صفحه.
11
کرمی، م.؛ رضایی، ب. و کولایی، ن.، 1385. مدل سازی سازگاری با محیط زیست Gazella subgutturosa subgutturosa در منطقه شکار گاراوییز استان کرمانشاه با ANN. مجله تحقیقات حیوانی مجله علمی ایران. دوره3، شماره 29، صفحات 340 تا 350.
12
کرمی،م.؛حسن زاده کیابی، ب.؛ سلمان ماهینی، س. و پناهنده، م.، 1391. ارزیابی محیط زیست پهناور با مدل HEP در استان استان گیلان. مجله گیاه و اکوسیستم. شماره 14، صفحات 25 تا 40.
13
کرمی، م.؛ حسنزاده کیابی، ب.؛ سلمان ماهینی، ع. و پناهنده، م.، 1387. ارزیابی زیستگاه قرقاول معمولی در زیستگاه توتستان استان گیلان براساس روش هپ. گیاه و زیست بوم. دوره 4، شماره 14، صفحات 25 تا 40.
14
مشتاقی، م.؛ کابلی، م. و شمسایی، م.، 1392. تعیین شاخص مطلوبیت زیستگاه(HSI) اردک سرسبز Anas platyrhynchos در رودخانه زاینده رود. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. دانشگاه آزاد اسلامی، واحد اهواز. دوره 5، شماره 18، صفحات 13 تا 22.
15
ملکینجف آبادی، س.، 1389. تعیین پارامترهای زیستگاه Ovis orientalis Isphahanicaتوسط GIS. پایان نامه کارشناسی ارشد گروه ارزیابی آلودگی، دانشگاه صنعتی اصفهان. 65 صفحه.
16
منوری، س.م. و مومن بلاه فرد، س.ا.، 1389. ابزار ارزیابی مبتنی بر GIS برای حفاظت از تنوع زیستی. مجله بین المللی تحقیقات محیط زیست. دوره 4، شماره 4، صفحات 701 تا 712.
17
هوشمند، ف. و ایزدی، ف.، 1392، ارزیابی زیستگاه گور ایرانی (Equus hemionus onager) در منطقه حفاظت شده المند- بهادران با روش HEP. اولین همایش ملی برنامه ریزی، حفاظت از محیط زیست و توسعه پایدار، همدان. صفحات 124 تا 138.
18
Brook, P., 2007. Improving habitat suitability index models, wildlife society bulletin. Vol. 35, No. 1, pp: 163-167.
19
De Cock, R., 2018. Biology and behaviour of lampyrids. Bioluminescence in Focus: A Collection of Illuminating Essays. University of Antwerp. pp: 163-200.
20
DFO. 2016. Review of Habitat Evaluation Procedure (HEP) input parameters and model results for the Meadowbank Gold Mine Project. DFO Can. Sci. Advis. Sec. Sci. Resp. 2016/038.
21
Doyon, F.; Higgelke, P.E. andMacLeod, H.L., 2000. Prepared for Millar Western Forest Products’ Biodiversity Assessment Project. KBM Forestry Consultants Inc. Thunder Bay, Ontario. pp: 8-19.
22
Ebischer, N.J. and Robertson, P. A., 2012. Practical aspects of compositional analysis as applied to pheasant habitat. Utilization in wildlife. pp: 285-293.
23
Eigenbrod, F.; Hecnar, S. and Fahrig, L., 2008. Accessible habitat: an improved measure of the effects of habitat loss and roads on wildlife populations. Landscape Ecology. Vol. 23, No. 2, pp: 159-168.
24
Erfanian, B.; Mirkarimi, S.H.; Mahini, A.S. and Rezaei, H.R. A., 2013. presence-only habitat suitability. modeling for Persian leopard in Golestan National Park, Iran. Wildlife Biology. Vol. 69, No. 2, pp: 630-632.
25
Gelbard, J. and Belnap, J., 2003. Roads as Conduits for Exotic Plant Invasions in a Semiarid Landscape.Conservation Biology. Vol. 17, No. 2, pp: 420-432.
26
Geneletti, D., 2003. Biodiversity Impact Assessment of roads: an approach based on ecosystem rarity. Environmental Impact Assessment Review. Vol. 23, pp: 343-365.
27
Haukos, D.A. and Smith, L.M., 1991. Vegetation management in playa lakes for wintering waterfowl. Management Note 14. Department of Range and Wildlife Management. Texas Tech University, Lubbock. 4 p.
28
Hirzel, A. and Arlettaz,R.,2003. Modeling habitat suitability for complex species distributions by the environmental distance geometric mean. Environ Manage. Vol. 32, 614 p.
29
Hing, S.; Narayan, E.J.; Thompson, R.C. and Godfrey, S., 2016. The relationship between physiological stress and wildlife disease: consequences for health and conservation. Ecology, Management and Conservation in Natural and Modified Habitats. Vol. 38, No. 1, pp: 309-317.
30
Kostadin, B.G.; Thorna, S.; Zlatanovc, T.; Nikolovd, B.P.; Shurulinkove, P.; Daskalovae, G. and Gottschalkf, T. K., 2018. Evaluating the importance of managed forests as habitat for the Semicollared flycatcher. Forest Ecology and Management. Vol. 41, No. 4, pp: 123-129.
31
Machmer, M.; Utzig, G.F.; Gates, T.M.; Savignac, C. and Dulisse, J., 2017. Development of a Northern Goshawk habitat suitability index for forest types of the Kootenay region. Conference: Proc. Biology and Management of Species and Habitats at Risk, At Kamloops, BC, Canada. pp: 241-246.
32
McCrain, M. and Gerald, R., 2012. Habitat evaluation procedures (HEP) applied to mitigation banking in North Carolina, Journal of Environmental Management. Vol. 45, No. 2, pp: 153-162.
33
McGarigal, K.; Crist, M.; Roworth, E. and Romme, W.H., 2001. Cumulative effects of roads and logging on landscape structure in the San Juan Mountains, Colorado (USA). Landscape Ecology. Vol. 16. pp: 327-349.
34
Morrison, M.L.; Marcot, B.G. and Mannan, R.W., 1992. Wildlife-habitat relationships: Concepts and applications. Madison. WI: University of Wisconsin Press. 343 p.
35
Olivier, F. and Wotherspoon, S.J., 2006. Habitat selection Modelling, using presence-only data: Case study of a colonial hollow nesting bird, the snow petrel. Ecological Modelling. Vol. 195, pp: 187-204.
36
Peterson, A.T.; Lash, R.R.; Carroll, D.S. and Johnson, K.M., 2006. Geographic potential for outbreaks of Marburg hemorrhagic fever. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. Vol. 75, pp: 9-15.
37
Tanaka, A., 2008. First application of Habitat Evaluation Procedure to EIA in Japan: How to quantify loss and gain of habitats. IAIA08 Conference Proceedings, 28th Annual Conference of the International Association for Impact Assessment. Perth Convention Exhibition Centre, Perth. Australia. pp: 741-749.
38
Timossi, I.C., Woodard, E.L. and Barrett, R.H., 2015, Habitat sustainability models for use with ARC/INFO. Department of Environmental Science, Policy, and Management Universit y of California. Berkeley and the Sierra Nevada Ecosystem Project. 26 p.
39
U.S. Fish and Wildlife Service (USFWS). 2010. Draft Fish and Wildlife Coordination Act Report for the Odessa Subarea Special Study, U. S. Bureau of Reclamation Pacific Northwest Regiom Yakima. Washington. 128 p.
40
Underhill, J., 2002. Roads and wildlife: A study of the effects of roads on mammals in roadside habitats. Doctor of Philosophy. School of Geography and Environmental Science. The University of Birmingham. 98 p.
41
Wakeley, J.S., 2018. A method to create simplified versions of existing habitat suitability index models. Environmental Management. Vol. 20, No. 1, pp: 79-83.
42
Yang, H.; Viñaa, b.A.; Tanga, Y.; Zhanga, C.J.; Wanga, F.; Zhaoa, Z. and Liua, J., 2017. Range-wide evaluation of wildlife habitat change: A demonstration using Giant Pandas. Biological Conservation. Vol. 213, No. 2, pp: 203-209.
43
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی رابطه بین شاخص حضور و تراکم زیرآبروک (Cinclus cinclus) و کیفیت آب (مطالعه موردی: برخی سیستمهای رودخانهای در استانهای تهران و همدان)
امروزه استفاده از گونههای جانوری شاخص و حساس به سلامت بومسازگانها بهویژه بیمهرگان آبزی، ماهیها و پرندگان به منظور ارزیابی سریع وضعیت این سیستمها و صرفهجویی در زمان، نیرو و هزینه مورد توجه قرار گرفته است. لذا،این مطالعه با هدف بررسی شاخص حضور و تراکم زیرآبروک با برخی پیراسنجههای کیفی آب در چند رودخانه کوهستانی واقع در استانهای تهران و همدان انجام یافت. در این پژوهش با پیمایش در امتداد رودخانههای مورد مطالعه نسبت به ثبت نقاط حضور و تراکم زیرآبروکها اقدام شد. سپس متغیرهای دما، غلظت اکسیژن محلول، هدایت الکتریکی و pH در نقاط حضور و تراکم گونه مورد نظر ثبت شد. پردازش آماری داده ها نیز توسط نرم افزارهای Minitab و STATISTICA انجام یافت.نتایج آنالیز رگرسیون لجستیک ترتیبی و از طرفی نتایج حاصل از مدل آکائیک نشان داد که متغیرهای هدایت الکتریکی، فراوانی ماکروبنتوزها و دمای آب با پیشبینی حضور و تراکم زیرآبروکها در رودخانههای مورد مطالعه رابطه به نسبت معنیدار داشته و سایر متغیرها رابطه معنیدار با حضور و تراکم این پرنده نشان ندادند. از اینرو، نتایج این مطالعه توانسته است تا حدودی رابطه بین حضور و تراکم زیرآبروک و کیفیت آب را به اثبات رساند.
http://www.aejournal.ir/article_92485_73417f5a9ebabbc763b52f7a1fb2229f.pdf
2019-07-23
125
132
شاخص زیستی
زیرآبروک
پیراسنجههای کیفی آب
تهران
همدان
سارا
یالپانیان
ssaarraayl@gmail.com
1
گروه محیطزیست، دانشکده علوم پایه، واحد همدان، دانشگاه آزاد اسلامی، همدان، ایران
AUTHOR
سهیل
سبحان اردکانی
soheil_sobhan@yahoo.com
2
گروه محیطزیست، دانشکده علوم پایه، واحد همدان، دانشگاه آزاد اسلامی، همدان، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد
کابلی
mkaboli@ut.ac.ir
3
گروه محیطزیست، دانشکده منابعطبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
لیما
طیبی
lima_tayebi@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده منابعطبیعی و محیطزیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
AUTHOR
عاطفه
اسدی
atef.asadi@iauh.ac.ir
5
آزمایشگاه بیوجغرافی و اکولوژی مهرهداران، مرکز مطالعات علمی ملی مونتپلیه، مونتپلیه، فرانسه
AUTHOR
زینب
اسدی
z.asadi92@srbiau.ac.ir
6
گروه محیطزیست، دانشکده منابعطبیعی و محیطزیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
فاطمه
ناصری
fnaserii@ut.ac.ir
7
گروه محیطزیست، دانشکده منابعطبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
احمدی، م.ر. و نفیسی، م.، 1380. شناسایی موجودات شاخص بیمهره آبهای جاری. انتشارات خبیر. 240 صفحه.
1
پذیرا، ع.؛ امامی، س.م.؛ کوهگردی، ا.؛ وطندوست، ص.و اکرمی ر.، 1387. اثر برخی عوامل محیطی بر تنوعزیستی ماکروبنتوزهای رودخانههای دالکی و حله بوشهر. شیلات. دوره 2، شماره 4، صفحات 65 تا 70.
2
خاتمی، س.ه.؛ ریاضی، ب. و مدیری آثاری، س.ع.، 1386. بررسی کیفیت رودخانه کرج براساس تنوع خانوادههای درشت بیمهرگان کفزی.علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 9، شماره 1، صفحات 71 تا 78.
3
ربانیها، م.؛ ایزدپناهی،غ.ر.؛ محسنیزاده، ف. و عوفی ، ف.، 1391. تغییرات اجتماع پلانکتونها در آبهای دور از ساحل جنوب استان بوشهر. اقیانوسشناسی. دوره 3، شماره 11، صفحات 21 تا 31.
4
طیبی، ل. و سبحان اردکانی، س.، 1391. سنجش پارامترهای کیفی آب رودخانه گاماسیاب و عوامل مؤثر بر آن. علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 14، شماره 2، صفحات 37 تا 49.
5
کابلی، م.؛ علیآبادیان، م.؛ توحیدیفر، م.؛ هاشمی، ع.؛ موسوی، ی.ب.؛ روزلار، م. و حسنزادهکیابی، ب.، 1395. اطلس پرندگان ایران. نشر جهاد دانشگاهی. 628 صفحه.
6
کیانی، ر.ا.؛ سبحان اردکانی، س. و چراغی، م.، 1396. بررسی ترکیبات تریهالومتان در تصفیهخانه آب عباسآباد شهر همدان. مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی همدان. دوره 24، شماره 1، صفحات 68 تا 75.
7
هوشیاریپور، ف.؛ یزدی، ج.؛ افتخاری، م.؛ شش انگشت، س. و جوادی، ف.، 1395. مدیریت سیلاب در حوضه آبریز رودخانه کن با رویکرد شبیهسازی و بهینهسازی. پژوهشهای تجربی در مهندسی عمران. دوره 3، شماره 1، صفحات 73 تا 89.
8
یوسفی، ع. و مهدیان، ش.، 1393. ارزیابی ضرورت اقتصادی و اجتماعی بازیافت پساب در کشور. بازیافت آب. دوره 1، شماره 1، صفحات 1 تا 7.
9
Anderson, C.M.; Spellman, G.M.; Ferrell, C.S.; Strickler, K. and Sarver, S.K., 2008. Conservation genetics of American Dipper (Cinclus mexicanus): the genetic status of a population in severe decline. Conservation Genetics. Vol. 9, No. 4, pp: 939-944.
10
Barbour, M.T.; Gerritsen, J.; Snyder, B.D. and Stribling, J.B., 1999. Rapid bioassessment protocols for use in streams and wadeable rivers: periphyton, benthic macroinvertebrates and fish - Second Edition. US Environmental Protection Agency, Office of Water. Washington, DC., USA.
11
Begum, F.; Rubina, Ali, K.; Khan, A.; Hussain, I.; Ishaq, S. and Ali, S., 2014. Water quality assessment using macroinvertebrates as indicator in sultanabad sstream (Nallah), Gilgit, Gilgit Baltistan, Pakistan. Journal of Biodiversity and Environmental Sciences. Vol. 5, No. 4, pp: 564-572.
12
Buckton, S.T.; Brewin, P.A.; Lewis, A.; Stevens, P. and Ormerod, S.J., 1998. The distribution of dippers, Cinclus cinclus (L.), in the acid-sensitive region of Wales, 1984-95, Freshwater Biology. Vol. 39, No. 2, pp: 387-396.
13
Burnham, K.P. and Anderson, D.R., 2002. Formal Inference from More Than One Model: Multimodel Inference (MMI). Model selection and multimodel inference: A practical information-theoretic approach, 2nd ed. Springer-Verlag, New York, New York. pp: 149-205.
14
Dodds, W.K. and Whiles M.R., 2002. Freshwater Ecology: Concepts and Environmental Applications of Limnology. Academic press, California, USA.
15
Elmberg, J.; Nummi, P.; Poysa, H. and Sjoberg, K., 1994. Relationships between species number, lake size and resource diversity in assemblages of breeding waterfowl. Journal of Biogeography. Vol. 21, No. 1, pp: 75-84.
16
Everard, M.; Fletcher, S.M.; Powell, A. and Dobson, M., 2011. The feasibility of developing multi-taxa indicators for landscape scale assessment of freshwater systems. Freshwater Reviews. Vol. 4, No. 1, pp: 1-19.
17
Feck, J. and Hall JR., R.O., 2004. Response of American dippers (Cinclus mexicanus) to variation in stream water quality. Freshwater Biology. Vol. 49, No. 9, pp: 1123-1137.
18
Hegelbach, J., 2001. Water temperature and phytophenology indicate the earlier onset of oviposition in Eurasian Dipper (Cinclus cinclus) from the Swiss Lowlands. Journal of Ornithology. Vol, 142, No. 3, pp: 284-294.
19
Hourlay, F.; Libois, R.; D’Amico, F.; Sarà, M.; O’Halloran, J. and Michaux, J.R., 2008. Evidence of a highly complex phylogeographic structure on a specialist river bird species, the dipper (Cinclus cinclus). Molecular Phylogenetics and Evolution. Vol. 49, No. 2, pp: 435-444.
20
Jenkins, R.K.B. and Ormerod, S.J., 1996. The influence of a river bird, the dipper (Cinclus cinclus), on the behaviour and drift of its invertebrate prey. Freshwater Biology. Vol. 35, No. 1, pp: 45-56.
21
Khoramnejadian, S. and Fatemi, F., 2017. Determination of lead and cadmim in the water of the Damavand River, Iran. Applied Ecology and Environmental Research. Vol. 15, No. 1, pp: 439-444.
22
Li, L.; Zheng, B. and Liu, L., 2010. Biomonitoring and bioindicators used for river ecosystems: definitions, approaches and trends. Procedia environmental sciences. Vol. 2, pp: 1510-1524.
23
Marques, J.C., 2009. Ecological indicators for coastal and estuarine environmental assessment: a user guide. Wit Press. Vol. 183, pp: 34-50.
24
Metcalfe, J.L., 1989. Biological water quality assessment of running waters based on macroinvertebrate communities: history and present status in Europe. Environmental pollution. Vol. 60, No. 1-2, pp: 101-139.
25
Moreno-Rueda, G. and Rivas, J.M., 2007. Recent changes in allometric relationships among morphological traits in the dipper (Cinclus cinclus). Journal of Ornithology. Vol. 148, No. 4, pp: 489-494.
26
Øigarden, T. and Linløkken, A., 2010. Is the breeding success of the white-throated dipper Cinclus cinclus in Hedmark, Norway influenced by acid rain? Ornis Norvegica. Vol. 33, pp: 118-129.
27
Ormerod, S.J.; Bull, K.R.; Cummins, C.P.; Tyler, J. and Vickery, J.A., 1988. Egg mass and shell thickness in dippers Cinclus cinclus in relation to stream acidity in Wales and Scotland. Environmental Pollution. Vol. 55, No. 2, pp: 107-121.
28
Ormerod, S.J. and Tyler, S.J., 1991. Exploitation of prey by a river bird, the dipper Cinclus cinclus (L.), along acidic and circumneutral streams in upland Wales. Freshwater Biology. Vol. 25, No. 1, pp: 105-116.
29
Ormerod, S.J. and Tyler, S.J., 1994. Inter-and intra-annual variation in the occurrence of organochlorine pesticides, polychlorinated biphenyl congeners, and mercury in the eggs of a river passerine. Archives of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 26, No. 1, pp: 7-12.
30
Riahi-Madvar, H.; Ayyoubzadeh, S.A.; Khadangi, E. and Ebadzadeh, M.M., 2009. An expert system for predicting longitudinal dispersion coefficient in natural streams by using ANFIS. Expert Systems with Applications. Vol. 36, No. 4, pp: 8589-8596.
31
Saeedi, M.; Hosseinzadeh, M. and Rajabzadeh, M., 2011. Competitive heavy metals adsorption on natural bed sediments of Jajrood River, Iran. Environmental Earth Sciences. Vol. 62, No. 3, pp: 519-527.
32
Schramm, W. and Nienhuis, P., 1996. Marine Benthic Vegetation: Recent Changes and the Effects of Eutrophication. Springer Verlag, Berlin. pp: 123.
33
Singh K.P.; Malik, A.; Mohan, D. and Sinha, S., 2004. Multivariate statistical techniques for the evaluation of spatial and temporal variations in water quality of Gomti River (India) - a case study. Water Research. Vol. 38, No. 18, pp: 3980-3992.
34
Sobhanardakani, S. and Jafari, S.M., 2014. Assessment of heavy metals (Cu, Pb and Zn) in different tissues of common carp (Cyprinus carpio) caught from Shirinsu Wetland, Western Iran. Journal of Chemical Health Risks. Vol. 4, No. 2, pp: 47-54.
35
Sobhanardakani, S., 2017. Potential health risk assessment of heavy metals via consumption of caviar of Persian sturgeon. Marine Pollution Bulletin. Vol. 123, No. 1-2, pp: 34-38.
36
Sobhanardakani, S., 2018. Arsenic health risk assessment through groundwater drinking (Case study: Qaleeh Shahin agricultural region, Kermanshah Province, Iran), Pollution. Vol. 4, No. 1, pp: 77-82.
37
Thorp, J.H. and Covich, A.P., 2009. Ecology and Classification of North American Freshwater Invertebrates. Academic Press.
38
Torres, R., 1995. Waterfowl community structure of laguna Santo Domingo (Cordoba) during an annual cycle. Revista de la Asociacion de Ciencias Naturales del Litoral.Revista de la Asociacion de Ciencias Naturales del Litoral. Vol. 26, No. 1, pp: 33-40.
39
Vickery, J., 1991. Breeding density of dippers Cinclus cinclus, grey wagtails Motacilla cinerea and common sandpipers Actitis hypoleucos in relation to the acidity of streams in south-west Scotland. Ibis. Vol. 133, No. 2, pp: 178-185.
40
Vickery, J.A. and Ormerod, S.J., 1991. Dippers as indicators of stream acidity. Acta XX Congressus Internationalis Ornithologici. Vol. 4, pp: 2494-2502.
41
Yoerg, S.I., 1994. Development of foraging behaviour in the Eurasian dipper, Cinclus cinclus, from fledging until dispersal. Animal Behaviour. Vol. 47, No. 3, pp: 577-588.
42
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات تزریق داخل تخم مرغی عصاره بره موم بر عملکرد جوجه درآوری، شمارش سلولهای خونی و خصوصیات لاشه جوجههای گوشتی
هدف این مطالعه بررسی تزریق داخل تخم مرغی عصاره بره موم بر عملکرد جوجه درآوری، شمارش سلولهای خونی و خصوصیات لاشه جوجههای گوشتی بود. در روز 15 جوجه کشی 324 عدد تخم مرغ های مادر گوشتی سویه راس 308، توزین و در قالب طرح کاملاً تصادفی به شش گروه آزمایشی با سه تکرار و هر تکرار شامل 18 تخم مرغ تقسیم و در مایع آمنیوتیک عصاره بره موم تزریق شد. تیمارهای آزمایشی شامل دو تیمار شاهد منفی بدون تزریق، شاهد مثبت با تزریق 60 میلی لیتر آب مقطر و چهار تیمار دیگر عبارت از تزریق 4 سطح 150، 300، 600 و 1200 قسمت در میلیون از عصاره بره موم به آمنیون، بودند. نتایج نشان داد که تزریق عصاره بره موم به تخم مرغ در روز 15 انکوباسیون تاثیری بر درصد جوجه درآوری، وزن جوجههای تفریخ شده و نسبت وزن جوجههای تفریخ شده به وزن تخم مرغ نشان نداد. درحالیکه 1200 قسمت در میلیون عصاره بره موم نسبت وزن جوجههای تفریخ شده به وزن تخم مرغ را در مقایسه با گروه شاهد افزایش داد. تزریق داخل تخم مرغی عصاره بره موم در سطوح مختلف نتوانست غلظت خونی گلبول سفید کل، هتروفیل، لنفوسیت، مونوسیت و ائوزینوفیل جوجههای گوشتی را تحت تاثیر قرار دهد. هم چنین وزن لاشه، وزن قلب، طحال و بورس فابرسیوس با تزریق داخل تخم مرغی عصاره بره موم در سن 42 روزگی تحت تاثیر قرار نگرفتند. نتایج این تحقیق پیشنهاد می کند که تزریق داخل تخم مرغی عصاره بره موم نمی تواند در بهبود درصد جوجه درآوری، وضعیت شمارش سلولهای خونی و خصوصیات لاشه جوجههای گوشتی موثر باشد.
http://www.aejournal.ir/article_93017_3a4a7a1d8f31c5256e698e7a400b66d8.pdf
2019-07-23
133
138
خصوصیات لاشه
جوجه های گوشتی
سلول های خونی
عصاره بره موم
عملکرد رشد
جمال
سیف دواتی
jseifdavati@uma.ac.ir
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
LEAD_AUTHOR
صیاد
سیف زاده
sseyfzadeh@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
محسن
رمضانی
ramezani.mohsen57@gmail.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
ساحل
بخشایش
7676sahel@gmail.com
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
حسین
عبدی بنمار
abdibenemar@uma.ac.ir
5
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
رضا
سید شریفی
reza_seyedsharifi@yahoo.com
6
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
اسلامی، م. و سالارمعینی، م.،1394. اثر تغذیه درون تخم مرغ اسیدآمینه، آلبومین و دکستروز بر عملکرد رشد، فراسنجه های خونی و خصوصیات لاشه جوجه های گوشتی. مجله تحقیقات تولیدات دامی. دوره 4، شماره 4، صفحات 63 تا 73.
1
آببند، م. و سالارمعینی، م.، 1391. استفاده از سطوح مختلف پیکولینات کروم و عصاره روغنی بره موم بر عملکرد و فراسنجه های ایمنی. فصلنامه پژوهش های علوم دامی. سال 22، شماره 4، صفحات 105 تا 112.
2
پوررضا، ج. و کریمی، ا.، 1377. جوجه کشی نشر: سازمان اقتصادی کوثر، واحد آموزش و پژوهش. 495 صفحه.
3
قاسمی دارستانی، م.؛ ابراهیمی محمودآباد، س.ر. و کیان فر،ر.، 1395. تأثیرسطوح مختلف پودر بره موم برعملکردوسیستم ایمنی جوجههای بلدرچین در دوره رشد پژوهش های علوم دامی (دانش کشاورزی). دوره 26، شماره 1، صفحات 131 تا 147.
4
مهدی زاده تکلیمی، س.م.؛پوررضا ج.؛ جوکار، ع.؛ لطف الهیان، ه. و طهماسبی، غ.، 1383. اثر استفاده از بره موم در جیره بر روی عملکرد و سیستم ایمنی مرغان تخمگذار تجارتی. نشریه پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. دوره 17، شماره 3 (پیآیند 64)، صفحات 85 تا 89.
5
نظیفی، س.،1376. هماتولوژی و بیوشیمی بالینی پرندگان. انتشارات دانشگاه شیراز. 276 صفحه.
6
Aygun, A., 2016. The effects of in-ovo injection of propolis on egg hatchability and starter live performance of Japanese quails. Brazilian journal of poultry science. Vol. 18, pp: 83-89.
7
Cetin, E.; Silici, S.; Cetin, N. and Guclu, B.K., 2010. Effect of diet containing different concentrations of propolis on hematological and immunological variables in laying hens. Journal of Poultry Science. Vol. 89, pp: 1703-1708.
8
Coskun, I.; Cayan, H.; Yılmaz, O.; Taskin, A.; Tahtabicen, E. and Samli, H.H., 2014. Effects of in-ovo pollen extract injection to fertile broiler eggs on hatchability and subsequent chick weight. Turkish Journal of Agricultural and Natural Sciences. Vol. 1, pp: 485-489.
9
Dimov, V.; Ivanovska, N.; Manolova, N.; Bankova, V.; Nikolav, N. and Popov, S., 1991. Immunomodulatory action of propolis. Influence on anti- infectious protection and macrophage function. Apidologie. Vol. 22, pp: 155-162.
10
Dooley, M.; Peebles, E.D.; Zhai, W.; Mejia, L.; Zumwalt, C.D. and Corzo, A., 2011. Effects of L-carnitine via in ovo injection with or without L-carnitine feed supplementation on broiler hatchability and posthatch performance.Journal of Applied Poultry Research. Vol. 20, pp: 491-497.
11
Dos Santos, T.T.; Corzo, A.; Kidd, M.T.; McDaniel, C.D. and Araújo, L.F., 2010. Influence of in ovo inoculation with various nutrients and egg size on broiler performance. Journal of Applied Poultry Research. Vol. 19, pp: 1-12.
12
Ferket, P.R., 2006. Incubation and in-ovo nutrition affects neonatal development, 33rd Annual Carolina Poultry Nutrition Conference, September 26, 2006, Sheraton Imperial Hotel, North Carolina.
13
Freitas, J.A.; Vanat, N.; Pinheiro, J.W.; Balarin, M.R.; Sforcin, J.M. and Venancio, E.J., 2011. Effects of propolis on antibody production by laying hens. Poultry Science. Vol. 90, pp: 1227-1233.
14
Giurgea, R.; Popescu, H.; Polinicencu, C. and Copreanu, D., 1982. Effect of standardized propolis extracts on the centeral lymphatic system and the immunological reactions of chickens. Clujul Medical. Vol. 55, pp: 72-75.
15
Irons, R.D. and Moore, B.J., 1980. Effect of short term benzene administration on circulating lymphocyte subpopulations in the rabbit: Evidence of a selective B-lymphocyte sensitivity. Research communications in chemical Pathology and Pharmacology. Vol. 27, pp: 147-155.
16
Kadam, M.M.; Barekatain, M.R.; Bhanja, S.K. and Iji, P.A., 2013. Prospects of in ovo feeding and nutrient supplementation for poultry: the science and commercial applications-a review. Journal of Science Food Agriculter. Vol. 93, pp: 3654-3661.
17
Keralapurath, M.M.; Corzo, A.; Pulikanti, R.; Zhai, W. and Peebles, E.D., 2010. Effects of in ovo injection of L-carnitine on hatchability & subsequent broiler performance and slaughter yield. Poultry Science. Vol. 89, pp: 1497-1501.
18
Kheiri, F. and Toghyani, M., 2007. Effect of different levels of chromium chloride on performance and antibody titer against Newcastle and Avian Influenza virus in broiler chicks. 16th European Symposium on Poultry Nutrition. Edinburgh. Scotland.
19
Kupczyński1, R.; Adamski, M.; Falta, D. and Roman, A., 2012. The efficiency of propolis in post-colostral dairy calves. Archiv fur Tierzucht. Vol. 55, pp: 315-324.
20
Lange, A.; Smolik, R.; Zatoński, W. and Szymańska, J., 1973. Serum immunoglobulin levels in workers exposed to benzene, toluene and xylene. International Arch Arbeitsmed. Vol. 31, pp: 37-44.
21
Mohammadzadeh, S.; Shariatpanahi, M.; Hamedi, M.; Ahmadkhaniha, R.; Samadi, N. and Ostad, S.N., 2007. Chemical composition of oral toxicity and antimicrobial activity of Iranian propolis. Food Chemistry. Vol. 3, pp: 1097-1103.
22
Moran Jr, E.T., 2007. Nutrition of the developing embryo and hatchling. Poultry Science. Vol. 86, pp: 1043-1049.
23
NRC. 1994. Nutrient requirements of poultry. 9th rev. Ed. Washington D.C: NAP.
24
Ohta, Y. and Kidd, M.T., 2001. Optimum site for in ovo propolis injection in broiler breeder eggs. Poultry Science. Vol. 80, pp: 1425-1429.
25
SAS Institute. 2003. SAS User’s Guide. Statistics. Version 9.1 ed. SAS Institute Inc., Cary, NC.
26
Seven, I.; Aksu, T. and Tatli Seven, P., 2007. Propolis ve hayvan becalmed kullanımı, Istanbul Üniveristesi Veteriner Fakültesi Dergisi. Vol. 18, pp: 79-84.
27
Shihab, I.M. and Ali, B.Z., 2012. Effect of propolis in diet supplementation on the immune response against Newcastle disease and hematological picture in broiler chicks. Al-Anbar Journal of Veterinary Science. Vol. 5, pp: 40-46.
28
Uni, Z.; Ferket, P.R.; Tako E. and Kedar, O., 2005. In ovo feeding improves energy status of late-term chicken embryos. Poultry Science. Vol. 84, pp: 764-770.
29
Zhai, S.; Neumoan, L.; Latour, M.A. and Hester, P.Y., 2006. The effect of in ovo injection of propolis on hatch rate and body weight of white leghorns. Poultry Science. Vol. 85, pp: 146-151.
30
Ziaran, H.R.; Rahmani, H.R. and Pourreza, J., 2005. Effect of dietary oil extract of propolis on immune response and broiler performance. Pakistan Journal of Biological Science. Vol. 8, pp: 1485-1490.
31
ORIGINAL_ARTICLE
مدل سازی پراکنش افعی قفقازی (Gloydius halys caucasicus) در ایران
افعی قفقازی (Gloydius halys caucasicus) تنها گونه از زیرخانواده Crotalinae در ایران است که در مناطق ساحلی ایران، بین کوه های البرز و دریای خزر یافت می شود. تاکنون مطالعاتی در زمینه دوشکلی جنسی، عدم تقارن فلس ها در ناحیه سر، بررسی صفات مورفولوژیک، مریستیک و مورفومتریک و همچنین بررسی صفات مریستیک نامتقارن انجام شده است. اما در ایران تاکنون مطالعه ای در زمینه مطلوبیت زیستگاه افعی قفقازی انجام نشده است که در این پژوهش مورد توجه قرار خواهد گرفت. در این مطالعه با استفاده از نقاط حضور گونه به دست آمده از کتاب ها، مقالات و نمونه های موجود در موزه ها و کلکسیون های شخصی و 19 لایه زیست اقلیمی با مدل Maxent الگوی پراکنش جغرافیایی بالقوه افعی قفقازی در ایران پیش بینی شد. سپس نقشه مطلوب ترین مناطق پراکنش با استفاده از Maxent تهیه گردید و اهمیت نسبی متغیرها براساس آزمون جک نایف حاصل از Maxent ارزیابی شد. در نهایت شاخص صحت سنجی مدل سازی مورد ارزیابی قرار گرفت. نتایج نشان می دهد پراکنش کلی افعی قفقازی مناطق ساحلی ایران را شامل می شود که مطلوب ترین مناطق پراکنش بالقوه افعی قفقازی در ایران با نقاط حضور ثبت شده برای این گونه در ایران مطابقت دارد. پیش بینی پراکنش افعی قفقازی و وضعیت زیستگاه های تحت اشغال آن ها در مشخص کردن مباحث حفاظتی دارای اهمیت است.
http://www.aejournal.ir/article_91630_f69141834bca13949cfc215cc98d0797.pdf
2019-07-23
139
146
افعی قفقازی
Gloydius halys caucasicus
ایران
MAXENT
پراکنش
آیجمال
قلیچی سلخ
ghelichy.a@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران
AUTHOR
حاجی قلی
کمی
hgkami2000@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
خسرو
رجبی زاده
khosro.rajabizadeh@gmail.com
3
گروه مطالعاتی خزندگان فلات ایران، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران
AUTHOR
اسدی، ع.؛ کابلی، م.؛ احمدی، م.؛ کفاش، ا.؛ نظری زاده، م.؛ بهروز، ر. و رجبی زاده، م.، 1395. پیش بینی حضور جمعیت های رلیکت افعی های کوه زی جنس Montivipera در غرب ایران، مدل سازی زیستگاه مبتنی بر تجمیع چهار الگوریتم همراه با بارزسازی اثر تغییرات اقلیمی از گذشته تا آینده. محیط زیست طبیعی (منابع طبیعی ایران). دوره 69، شماره 2، صفحات 303 تا 327.
1
تندوران زنگنه، م.؛ فاخران اصفهانی، س.؛ پورمنافی، س. و سن، ج.، 1395. ارزیابی مطلوبیت زیستگاه و وضعیت حفاظتی گونه به شدت در خطر انقراض سمندر لرستانی (Neurergus kaiseri) در استانهای لرستان و خوزستان. بوم شناسی کاربردی. دوره 5، شماره 17، صفحات 11 تا 24.
2
فداکار، د.؛ شیخی ئیلانلو، ص.؛ قلی پور، م. کمی، ح.ق.، 1395. پیش بینی پراکنش بالقوه آگامای سروزغی تورانی Phrynocephalus mystaceous با الگوریتم آنتروپی بیشینه در ایران (سوسمارها: تیره آگامیده). دومین کنفرانس بین المللی اکولوژی سیمای سرزمین. دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان. 12 صفحه.
3
کفاش، ا.؛ یوسفی، م.؛ احمدی، م.؛ کهلر، گ. و کابلی، م.، 1392. پیش بینی اثر تغییرات اقلیمی بر خزندگان مناطق بیابانی ایران (مطالعه موردی: سوسمار دم تیغی بین النهرین Saara loricata). سومین کنفرانس بین المللی برنامه و مدیریت محیط زیست. دانشگاه تهران.
4
وارسته مرادی، ح. و سلمان ماهینی، ع.، 1390. ارزیابی زیستگاه حیات وحش. ترجمه جلد اول، چاپ اول، انتشارات آیینه نما. صفحات 2 تا 16.
5
Anderson, R.P.; Lew, D. and Townsend Peterson, A., 2003. Evaluating predictive models of species distributions: criteria for selecting optimal models. Ecological Modelling. Vol. 162, pp: 211-232.
6
Adjaye, T.A., 2011. Maxent modeling of the Apennine brown bear using incidental presence records: A comparison of raw records and kernel density in southern Majella NP. Master thesis. University of twente. 52 P.
7
Ataev, Ch.A., 1985. Reptiles of the Mountains of Turkmenistan [in Russian]. Ashkhabad: Ilym. Aubret, F.; Shine, R. and Bonnet, X. 2004: Adaptive developmental plasticity in snakes. Nature. Vol. 31, pp: 261-262.
8
Ananjeva, N.B.; Borkin, L.; Darevsky, I.S. and Orlov, N.N., 1998. Amphibians and Reptiles. Encyclopedia of the Nature in Russia [in Russian], ABF: Moscow.
9
Bassi, E.; Willis, S.G.; Passilongo, D.; Mattioli, L. and Apollonio, M., 2015. Predicting the spatial distribution of wolf (Canis lupus) breeding areas in a mountainous region of Central Italy. PloS one. Vol. 6, 124 p.
10
Chernov, S.A., 1934. On the systematics and distribution of Agkistrodon (Ophidia) in the Soviet Union [in Russian]. Trudy Akademiia Nauk SSSR. Vol. 6, pp: 350-356.
11
Dobson, P.A., 1996. Conservation and Biodiversity. New York: Scientific American Library.
12
Elith, J.; Steven, J.; Phillips, A.; Trevor, H.; Miroslav, D.; Yung, E. and Colin, J., 2011. A statistical explanation of MaxEnt for ecologists. Diversity and Distributions J. Vol. 17, pp: 43-57.
13
Guisan, A. and Zimmermann, N.E., 2000. Predictive habitat distribution models in ecology. Ecological Modelling. Vol. 135, No. 2, pp: 147-186.
14
Guisan, A. and Thuiller, W., 2005. Predicting species distribution: Offering more than simple habitat models. Ecological Letter. Vol. 8, pp: 993-1009.
15
Gibson, L.A.; Wilson, B.A.; Cahill, D.M. and Hill, J., 2003. Modeling Habitat Suitability of the Swamp Antechinus (Antechinus minimus maritimus) in the costal heathlands of soutern Victoria, Australia. International Journal of Biological Conservation. Vol. 117, pp: 143-150.
16
Gloyd, H.K. and Conant, R., 1982. The classification of the Agkistrodon halys complex. Japanese Journal of Herpetology. Vol. 9, pp: 75-78.
17
Gloyd, H.K. and Conant, R., 1990. Snakes of the Agkistrodon complex. A monographic review. In: Contribution to Herpetology, No. 6. Ohio: Society forn the Study of Amphibians and Reptiles.
18
Hijmans, R.J.; Cameron, S.E.; Parra, J.L.; Jones, P.G. and Jarvis, A., 2005. Very high resolution interpolated climate surfaces for global land areas. International Journal of Climatology. Vol. 25, pp: 1965-1978.
19
Kumar, S. and Stohlgren, T.J., 2009. Maxent modeling for predicting suitable habitat for threatened and endangered tree Canacomyrica monticola in New Caledonia. Journal of Ecology and Natural Environment. Vol. 1, No. 4, pp: 94-98.
20
Loren, A.C.; De Siqueria, M.F.; De Giovanni, R.; Carvalho, A.C.L.F. and Parti, R., 2008. Potential distribution modelling using Mashine Learning. Proceedings of the 21st intrnational conference on Industrial, Engineering and other Applications of Applied Intelligent Systems: New Frontiers in Applied Artificial Intelligence. Vol. 5027, pp: 255-264.
21
Margules, C.R. and Pressey, R.L., 2000. Systematic conservation planning. Nature. Vol. 405, pp: 243-253.
22
Mack, E.L.; Firbank, L.G.; Bellary, P.E.; Hinsley, S.A. and Veitch, N., 1997. The comparison of remotely sensed and ground-based habitat area data using species-area models. Applied Ecology. Vol. 34, pp: 1222-1228.
23
Nilson, G., 1983. A new subspecies of the Asiatic pit viper Agkistrodon halys Pallas, 1776 (Serpentes, Viperidae) from Afghanistan. Bonner zoologische Beiträge. Vol. 34, pp: 469-476.
24
Nikolsky, A.M., 1916. Ophidia [in Russian]. In: Fauna of Russia and adjacent countries. Vol. 2. Reptiles, petrograd.
25
Orlov, N.L. and Barabanov, A.V., 1999. Analysis of nomenclature, classification, and distribution of the Agkisttrodon halys -Agkistrodon intermedius complexes: A critical review. Russian Journal of Herpetology. Vol. 6, pp: 167-192.
26
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological modeling. Vol. 190, No. 3, pp: 231-259.
27
Primack, B.R., 2002. Essentials of Conservation Biology. Massachusetts: Sinauer.
28
Rajabizadeh, M. and Kami, H.G., 2007. Population study of Gloydius halys caucasicus (Nikosky, 1916) (Reptilia: Viperidae) in central and eastern Alborz, Iran. Abstract Book of 2nd National Conference of Animal Science. 189 p.
29
Russell, F.E. and Campbell, J.R., 2015. Venomous terrestrial snakes of the Middle East. pp: 95-160.
30
Safaei-Mahroo, B.; Ghaffari, H.; Fahimi, H.; Broomand, S.; Yazdanian, M. and Kazemi, M., 2015. The herpetofauna of Iran: Checklist of taxonomy, distribution and conservation status. Asian Herpetological Research. Vol. 6, pp: 257-290.
31
Terentjev, P.V. and Chernov, S.A., 1949. Guide to amphibians and reptiles of the USSR [in Russian]. Third Edition. Moscow: Sovetskaya Nauka.
32
Williams, J.N.; Seo, C.; Thorne, J.; Nelson, J.K.; Erwin, S.; O’Brien, J.M. and Schwartz, M.W., 2009. Using species distribution models to predict new occurrences for rare plants. Diversity and Distributions. Vol. 15, pp: 565-576.
33
Warren, D.L. and Seifert, S.N., 2011. Ecological niche modeling in Maxent: the importance of model complexity and the performance of model selection criteria. Ecological Applications. Vol. 2, pp: 335-342.
34
ORIGINAL_ARTICLE
زیستگاه مناسب گونه در معرض خطر انقراض سمندر لرستانی (Neurergus kaiseri)
گونه سمندر لرستانی که در رشته کوه های زاگرس جنوبی در محدوده دو استان لرستان و خوزستان زیست می کند، با داشتن نوارهای بلند و نازک زرد رنگ و چندین خال سفید و گرد به راحتی از دو گونه دیگر جنس Neurergus در ایران (سمندر آذربایجان و سمندر کردستانی) متمایز می شود. یکی از کارآمدترین ابزارها برای ارزیابی صفات اکولوژیک مدل بندی الگوهای توزیع گونه است. در این مطالعه، از روش حداکثر آنتروپی (مکسنت) به عنوان ابزاری برای ارزیابی پراکنش بالقوه گونه سمندر لرستانی (Neurergus kaiseri) در محدوده دو استان لرستان و خوزستان استفاده شد. مساحت تحت منحنی AUC معادل 0/001±0/99 محاسبه شد که نشان دهنده صحت مدل و در نتیجه قابلیت استفاده از آن برای پیش بینی الگوهای حضور سمندر لرستانی است. بر طبق نقشه به دست آمده، چهار متغیر بیش ترین مشارکت را در پراکنش سمندر لرستانی دارند: عامل ارتفاع با (38 درصد)، بارش در گرم ترین یک چهارم سال (15/8 درصد)، کم ترین دما در سردترین ماه سال (10/3 درصد) و هم چنین بارش در یک چهارم سرد سال (8/7 درصد). برطبق نتایج به دست آمده در این مطالعه به نظر می رسد، سمندر لرستانی در نواحی کم بارش و مرتفع جنوب لرستان و شمال خوزستان زیست می کند، با این وجود مشاهدات میدانی نشان می دهد که این گونه برای بقا و تولیدمثل به سرچشمه های پر اکسیژن وابسته است.
http://www.aejournal.ir/article_92705_92f9c181c615634fdba60860b02d3fd1.pdf
2019-07-23
147
154
سمندر لرستانی
زیستگاه مناسب
مکسنت
محسن
امیری
tyam_57@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده علوم پایه، واحد همدان، دانشگاه آزاد اسلامی، همدان، ایران
AUTHOR
مریم
کیانی صدر
mkianysadr@gmail.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده علوم پایه، واحد همدان، دانشگاه آزاد اسلامی، همدان، ایران
LEAD_AUTHOR
علیرضا
پسرکلو
a.pesarakloo@gmail.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه اراک، اراک، ایران
AUTHOR
معصومه
نجیب زاده
masoumeh.najibzadeh@gmail.com
4
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران
AUTHOR
پسرکلو، ع.ر. و نجیب زاده، م.، 1394. پایش و سرشماری سمندر کوهستانی لرستان، محیط زیست استان لرستان.
1
Davies, A.J.; Wisshak, M.; Orr, J.C. and Roberts, J.M., 2008. Predicting suitable habitat for the cold-water coral Lophelia pertusa (Scleractinia). Deep-Sea Research Part I. Vol. 55, pp: 1048-1062.
2
Elith, J.; Graham, C.H.; Anderson, R.P.; Dudik, M.; Ferrier, S.; Guisan, A.; Hijmans, R.J.; Huettmann, F.; Leathwick, J.R. and Lehmann, A., 2006. Novel methods improve prediction of species’ distributions from occurrence data. Ecography. Vol.29, pp: 129-151.
3
Groff, A.L.; Sharyn, B.; Marks, S.M. and Hates, M.P., 2014. Using ecological niche models to direct rare amphibian survey: a case study using the Oregan spotted frog (Rana pretiosa). Herpetological Conservation and Biology. Vol. 9, No. 2, pp: 354-368.
4
Guisan, A. and Zimmermann, N.E., 2000. Predictive habitat distribution models in ecology. Ecological Modelling. Vol. 135, pp: 147-186.
5
Hernandez P.A.; Graham, C.H.; Master, L.L. and Albert, D.L., 2006. The effect of sample size and species characteristics on performance of different species distribution modeling methods. Ecography. Vol. 29, pp: 773-785.
6
Hijmans, R.J.; Cameron, S.E.; Parra, J.L.; Jones, P.G. and Jarvis, A., 2005. Very high resolution interpolated climate surfaces for global land areas. International Journal of Climatology. Vol. 25, pp: 1965-1978.
7
Hirzel, A.H.; Hausser, J.; Chessel, D. and Perrin, N., 2002. Ecological-niche factor analysis: how to compute habitat-suitability maps without absence data? Ecology. Vol. 83, pp: 2027-2036.
8
Hirzel, A.H. and Le Lay, G., 2008. Habitat suitability modeling and niche theory. Journal of Applied Ecology. Vol. 45, pp: 1372-1381.
9
Hortal, J.; Jime´nez-Valverde, A.; Go´mez, J.F.; Lobo, J.M. and Baselga, A., 2008. Historical bias in biodiversity inventories affects the observed environmental niche of the species. Oikos. Vol. 117, pp: 847-858.
10
Mobaraki, A.; Amiri, M.; Alvandi, R.; Tehrani, M.E.; Zarin Kia, H.; Khoshnamvand, A.; Ali Bali, A.; Forozanfar, E. and Browne, R.K., 2014. A conservation reassessment of the Critically Endangered, Lorestan newt Neurergus kaiseri (Schmidt 1952) in Iran. ARC journal. Vol. 9, No. 1, pp: 16-25.
11
Najibzadeh, M.; Gharzi, A.; Rastegar-Pouyani, N.; Rastegar-Pouyani, E. and Pesarakloo, A., 2017b. Habitat Suitability for the Caucasian Frog Rana macrocnemis Boulenger, 1885 (Amphibia: Anura: Ranidae). Russian Journal of Ecology. Vol. 48, No. 3, pp: 250-256.
12
Najibzadeh, M.; Gharzi, A.; Rastegar-Pouyani, N.; Rastegar-Pouyani, E. and Pesarakloo, A., 2017b. Habitat Suitability for the Habitat suitability and patterns of sex-biased migration of the Iranian long-legged wood frog, Rana pseudodalmatina (Anura: Ranidae). Biologia. Vol. 72, No. 6, pp: 686-693.
13
Pearson, R.G.; Raxworthy, C.J.; Nakamura, M. and Peterson, A.T., 2007. Predicting species distributions from small numbers of occurrence records: a test case using cryptic geckos in Madagascar. J. Biogeogr.Vol. 34, pp: 102-117.
14
Pearson, R.G.; Raxworthy C.J, Nakamura M, Peterson A.T. 2007. Predicting species distributions from small numbers of occurrence records: a test case using cryptic geckos in Madagascar. Journal of Biogeography,34: 102–117.
15
Phillips S.J, Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological Modelling. Vol. 190, pp: 231-259.
16
Phillips, S.J.; Dudik, M.; Elith, J.; Graham, C.H.; Lehmann, A.; Leathwick, J. and Ferrier, S., 2009 Sample selection bias and presence-only distribution models: implications for background and pseudo absence data. Ecological Applications. Vol. 19, pp: 181-197.
17
Phillips, S.J. and Dudik, M., 2008. Modeling of species distributions with Maxent: new extensions and a comprehensive evaluation. Ecography. Vol. 31, pp: 161-175.
18
Rissler, L.J. and Apodaca, J.J., 2007. Adding more ecology into species delimitation: ecological niche models and phylogeography help define cryptic species in the black salamander (Aneides flavipunctatus). SystematicBiology. Vol. 56, pp: 924-942.
19
Rödder, D. and Lötters, S., 2010. Potential distribution of the alien invasive Brown tree snake, Boiga irregularis (Reptilia: Colubridae). Pacific Science. Vol.64, pp: 11- 22.
20
Schmidt, K.P., 1952. Diagnoses of new amphibians and reptiles from Iran. Natural.
21
Schmidtler, J.J. and Schmidtler, J.F., 1975. Untersuchujngen an westpersischen Bergbachmolchen der Gattung Neurergus (Caudata, Salamandridae). Salamandra. Vol. 1, pp: 84-98.
22
Sharifi, M.; Farasat, H.; Barani-Beira, H.; Vaissi, S. and Foroozanfar, E., 2013. Notes on the distribution and abundance of the endangered Kaiser’s mountain newt, Neurergus kaiseri (Caudata: Salamandridae), in southwestern Iran. Herpetol Conservation and Biology.Vol. 8, No. 3, pp: 724-731.
23
Sharifi, M.; Rastegar-Pouyani, N.; Akmali, V. and Assadiannarengi, S., 2008. On distribution and conservation status of Neurergus kaiseri (Caudata: Salamandridae). Russ Journal of Herpetol. Vol. 15, pp:169-172.
24
Torki, F., 2012. Verbreitung, Morphologie, Ökologie, Biologie und Haltung von zwei iranischen Salamandern. (Distribution, Morphology, Ecology, Biology, and captive care of two Iranian salamanders) Sauria. Vol. 34, No. 1, pp: 3-20.
25
Tsoar, A.; Allouche, O.; Steinitz, O.; Rotem, D. and Kadmon, R., 2007. A comparative evaluation of presence-only methods for modelling species distribution. Diversity and Distributions. Vol. 13, pp: 397-405.
26
Wisz, M.S.; Hijmans, R.J.; Li, J.; Peterson, A.T.; Graham, C.H. and Guisan, A., 2008. Effects of sample size on the performance of species distribution models. NCEAS Predicting Species Distributions Working Group.Diversity and Distributions. Vol. 14, pp: 763-773.
27
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات تغذیه ای پروبوتیک لاکتوباسیلوس رامنوسوس (Lactobacillus rhamnosus) بر عملکرد رشد، فعالیت آنزیم های هضمی و میزان مقاومت در برابر آئروموناس هیدروفیلا (Aeromonas hydrophila) در ماهی تیلاپیای نیل (Oreochromis niloticus)
با توجه به این که باکتری (Aeromonas hydrophila) یکی از عوامل بیماری زا عمده در پرورش آبزیان آب شیرین محسوب می گردد، در تحقیق حاضر با هدف دستیابی به راهکاری جهت بهبود عملکرد رشد و همچنین سطح ایمنی ماهی تیلاپیای نیل (Oreochromis niloticus) در برابر باکتری آئروموناس هیدروفیلا، 4 گروه ماهی تیلاپیا O. niloticusبا وزن اولیه 16 گرم، به مدت 60 روز توسط جیره هایی حاوی سطوح مختلف پروبیوتیک لاکتوباسیلوس رامنوسوس(Lactobacillus rhamnosus) تغذیه شدند و در پایان پس از اندازهگیری شاخص های رشد و فعالیت آنزیم های هضمی روده، تحت تزریق باکتری آئروموناس هیدروفیلا قرار گرفتند و پس از بروز کامل بیماری، شاخص های خونی نیز مورد سنجش قرار گرفت. نتایج نشان داد وزن نهایی و ضریب تبدیل غذایی به ترتیب بیش ترین و کم ترین مقدار را در تیمار 3 گرم پروبیوتیک در هر کیلوگرم جیره دارا بود. به علاوه فعالیت آنزیم تریپسین در تیمار 3 و آنزیم آمیلاز در تیمارهای 2 و 3 گرم پروبیوتیک در هر کیلوگرم جیره به شکل معنی داری از سایر تیمارها بیش تر بود (0/05>P). یک هفته پس از تزریق باکتری نیز آنزیم های آلکالین فسفاتاز و آلانین آمینوترانسفراز موجود در سرم خون در تیمارهای 2 و 3 گرم پروبیوتیک در هر کیلوگرم جیره، در مقایسه با سایر تیمارها کم تر بود (0/05>P) و بقا در این تیمارها به ترتیب نسبت به سایر تیمارها افزایش یافت. به نظر می رسد استفاده از 2 تا 3 گرم پروبیوتیک لاکتوباسیلوس رامنوسوس در هر کیلوگرم جیره ماهی تیلاپیای نیل می تواند عملکرد رشد و ایمنی را به شکل قابل توجهی افزایش دهد.
http://www.aejournal.ir/article_93110_02fd6694b10824380fb023b4e890d0c4.pdf
2019-07-23
155
162
ایمنی غیر اختصاصی
Aeromonas hydrophila
Lactobacillus rhamnosus
افزایش وزن
آنزیم پروتئاز
سینا
جوانمردی
sina.javanmardi@ut.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
کامران
رضایی توابع
krtavabe@ut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
سعید
مرادی
s71moradi@ut.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
لیلا سادات
بیات غیاثی
leila.ghiasi.2017@ut.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
آهنگرزاده، م.؛ قربانپورنجف آبادی، م.؛ پیغان، ر.؛ شریف روحانی، م. و سلطانی، م.، 1394. نقش آئروموناس هیدروفیلا در سپتیسمیهای باکتریایی کپور ماهیان پرورشی استان خوزستان. مجله دامپزشکی ایران. دوره 11، شماره 3، صفحات 5 تا 11.
1
ایمان پور، م.ر.؛ روحی، ز.؛ سلاقی، ز.؛ بیک زاده، آ. و داوودی پور، ع.، 1394. اثر پروبیوتیک پریمالاک بر شاخص های رشد، پارامترهای بیوشیمیایی خون، بازماندگی و مقاومت در برابر تنش شوری بچه ماهی کپور معمولی دریایی (Cyprinus carpio). مجله علوم و فنون شیلات. دوره 4، شماره 3، صفحات 17 تا 28.
2
محمدی، ح.؛ آق، ن.؛ توکمه چی، ا. و نوری، ف.، 1390. بـررسـی اثرهای پروبیـوتیـک لاکتــوباسیلوس رامنـوسوس (Lactobacillus rhamnosus)وسیـاه دانـــه (Nigella sativa) بــر شاخصهای رشد ماهی قزلآلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) . مجله زیست شناسی کاربردی. دوره 25، شماره 2، صفحات 20 تا 26.
3
Abdel-Tawwab, M.; Abdel-Rahman, A.M. and Ismael, N.E., 2008. Evaluation of commercial live bakers’ yeast, Saccharomyces cerevisiae as a growth and immunity promoter for Fry Nile tilapia (Oreochromis niloticus) challenged in situ with Aeromonas hydrophila. Aquaculture. Vol. 280, pp: 185-189.
4
Ardó, L.; Yin, G.; Xu, P.; Váradi, L.; Szigeti, G.; Jeney, Z. and Jeney, G., 2008. Chinese herbs (Astragalus membranaceus and Lonicera japonica) and boron enhance the non-specific immune response of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) and resistance against Aeromonas hydrophila. Aquaculture. Vol. 275, pp: 26-33.
5
Balcázar, J.L.; De Blas, I.; Ruiz-Zarzuela, I.; Cunningham, D.; Vendrell, D. and Múzquiz, J.L., 2006. The role of probiotics in aquaculture. Veterinary microbiology. Vol. 114, pp: 173-186.
6
El-Rhman, A.M.A.; Khattab, Y.A. and Shalaby, A.M., 2009. Micrococcus luteus and Pseudomonas species as probiotics for promoting the growth performance and health of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Fish & Shellfish Immunology. Vol. 27, pp: 175-180.
7
FAO. 2016. Food and Agriculture Organization Publications, Rome.
8
Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO).1996. Aquaculture production statistics 1985–94. FAO Fisheries Circular, no. 815, Revision 8. FAO, Rome.
9
Furne, M.; Hidalgo, M.C.; Lopez, A.; Garcia-Gallego, M.; Morales, A.E.; Domezain, A.; Domezaine, J. and Sanz, A., 2005. Digestive enzyme activities in Adriatic sturgeon (Acipenser naccarii) and rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). A comparative study. Aquaculture. Vol. 250, pp: 391-398.
10
Giannenas, I.; Karamaligas, I.; Margaroni, M.; Pappas, I.; Mayer, E.; Encarnação, P. and Karagouni, E., 2015. Effect of dietary incorporation of a multi-strain probiotic on growth performance and health status in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish physiology and biochemistry. Vol. 41, pp: 119-128.
11
Hirano, J.; Yoshida, T.; Sugiyama, T.; Koide, N.; Mori, I. and Yokochi, T., 2003. The effect of Lactobacillus rhamnosus on enterohemorrhagic Escherichia coli infection of human intestinal cells in vitro. Microbiology and immunology. Vol. 47, pp: 405-409.
12
Hummel, B.C.W., 1959. A modified spectrophotometric determination of chymotrypsin, trypsin, and thrombin. Canadian journal of biochemistry and physiology. Vol. 37, pp: 1393-1399.
13
Lara-Flores, M.; Olvera-Novoa, M.A.; Guzmán-Méndez, B.E. and López-Madrid, W., 2003. Use of the bacteria Streptococcus faecium and Lactobacillus acidophilus, and the yeast Saccharomyces cerevisiae as growth promoters in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture. Vol. 216, pp: 193-201.
14
Nayak, S.K., 2010. Probiotics and immunity: a fish perspective. Fish & shellfish immunology. Vol. 29, pp: 2-14.
15
Nikoskelainen, S.; Ouwehand, A.; Bylund, G.; Salminen, S. and Lilius, E.M., 2003. Immune enhancement in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) by potential probiotic bacteria (Lactobacillus rhamnosus). Fish Shellfish Immunol. Vol. 15, pp: 443-452.
16
Panigrahi, A.; Kiron, V.; Kobayashi, T.; Puangkaew, J.; Satoh, S. and Sugita, H., 2004. Immune responses in rainbow trout (Oncorhynchusmykiss) induced by a potential probiotic bacteria Lactobacillusrhamnosus JCM 1136. Vet. Immunol. Immunopathol. Vol. 102, pp: 379–388.
17
Pirarat, N.; Kobayashi, T.; Katagiri, T.; Maita, M. and Endo, M., 2006. Protective effects and mechanisms of a probiotic bacterium Lactobacillus rhamnosus against experimental Edwardsiella tarda infection in tilapia (Oreochromis niloticus). Veterinary immunology and immunopathology. Vol. 113, pp: 339-347.
18
Refstie, S.; Landsverk, T.; Bakke-McKellep, A.M.; Ringø, E.; Sundby, A.; Shearer, K.D. and Krogdahl, Å., 2006. Digestive capacity, intestinal morphology, and microflora of 1-year and 2-year old Atlantic cod (Gadus morhua) fed standard or bioprocessed soybean meal. Aquaculture. Vol. 261, pp: 269-284.
19
Suzer, C.; Çoban, D.; Kamaci, H.O.; Saka, Ş.; Firat, K.; Otgucuoğlu, Ö. and Küçüksari, H., 2008. Lactobacillus spp. bacteria as probiotics in gilthead sea bream (Sparus aurata, L.) larvae: effects on growth performance and digestive enzyme activities. Aquaculture. Vol. 280, pp: 140-145.
20
Wang, M. and Lu, M., 2016. Tilapia polyculture: a global review. Aquaculture Research. Vol. 47, pp: 2363-2374.
21
Yanbo, W. and Zirong, X., 2006. Effect of probiotics for common carp (Cyprinus carpio) based on growth performance and digestive enzyme activities. Animal feed science and technology. Vol. 127, pp: 283-292.
22
Ziaei-Nejad, S.; Rezaei, M.H.; Takami, G.A.; Lovett, D.L.; Mirvaghefi, A.R. and Shakouri, M., 2006. The effect of Bacillus spp. bacteria used as probiotics on digestive enzyme activity, survival and growth in the Indian white shrimp (Fenneropenaeus indicus). Aquaculture. Vol. 252, pp: 516-524.
23
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه انگل های کرمی گوارشی در مولدین قره برون (Acipenser persicus) صید شده از سواحل جنوب شرقی دریای خزر (1396-1395)
این تحقیق در سال های 1395 و 1396 در مرکز بازسازی ذخایر شهید مرجانی استان گلستان به جهت بررسی وضعیت آلودگی به کرم های انگلی در دستگاه گوارش مولدین تاس ماهی ایرانی انجام گرفت. در سال 95 از دستگاه گوارش تعداد 11 مولد ماده تکثیر شده با میانگین طول و وزن به ترتیب 8/6±160/54 سانتی متر و 6/72±31/62 کیلوگرم دو گونه Cuculanus sphaerosephalus و Skrjabinopsolus semiarmatus و درسال 96 از 12 مولد ماده با میانگین طولی و وزنی به ترتیب 1/1±158/3 سانتی متر و 4/9±29/3 کیلوگرم تنها گونه جدا شده C. sphaerosephalus بود. درصد شیوع انگل کوکولانوس در 11 نمونه سال 1395، 72 درصد و درصد شیوع اسکریابینوپسولوس 27 درصد، میانگین شدت کوکولانوس 2/87±6 و میانگین شدت اسکریابینوپسولوس 2/64±3 محاسبه شد. درصد شیوع انگل کوکولانوس در 12 نمونه صید شده در سال 1396، 50 درصد و میانگین شدت آلودگی 3/25±3/17 محاسبه گردید. بیش ترین شدت آلودگی انگلی به کوکولانوس اسفراسفالوس تعلق داشت. این تحقیق نشان داد که تعداد و نوع آلودگی به انگل های گوارشی در ماهی قره برون نسبت به سال های گذشته در سواحل جنوب شرقی دریای خزر کاهش داشته است که می تواند حاصل تغییر رژیم غذایی و کاهش میزبان واسط باشد.
http://www.aejournal.ir/article_93409_91d4d6d2f252748dd1c3366b2b468346.pdf
2019-07-23
163
168
تاس ماهی ایرانی
انگل های کرمی گوارشی
دریای خزر
دستگاه گوارش
عباسعلی
آقایی مقدم
aghaeifishery@gmail.com
1
مرکز تحقیقات ذخایر آبزیان آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، موسسه تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
کامران
عقیلی
k_aghili33@yahoo.com
2
مرکز تحقیقات ذخایر آبزیان آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، موسسه تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، گرگان، ایران
AUTHOR
آقایی مقدم، ع.؛ حق پرست، س.؛ پازوکی، ج.؛ پورامینی، م.و درویش بسطامی، ک.، 1393. شیوع انگلهای کرمی بادکشدار و لولهای دستگاه گوارش، پوست و خون مولدین خاویاری در جنوب شرق دریای خزر. مجله پژوهش های جانوری (مجله زیست شناسی ایران). جلد 27، شماره 1، صفحات 1 تا 12.
1
بازاری مقدم، س.؛ مخیر، ب.؛ شناورماسوله، ع.؛ معصوم زاده، م.؛ جلیل پور، ج. و علیزاده، م.، 1391. مطالعه شیوع انگل های مولدین تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus) صید شده از سواحل جنوب غربی دریای خزر طی سال1388. نشریه بهره برداری و پرورش آبزیان. دانشگاه علوم کشاروزی و منابع طبیعی گرگان. جلد 1، شماره 4،صفحات 69 تا 79.
2
جلالی، ب.، 1377، انگل ها و بیماری های انگلی ماهیان آب شیرین. معاونت تکثیر و پرورش آبزیان، اداره کل آموزش و ترویج. صفحات 331 تا 415.
3
حق پرست، س.؛ آقایی مقدم، ع.؛ حاجی مرادلو، ع.؛ پهلونی، ه.؛ امینی، ک.؛ طاهری، ع. و محمدخانی، ح.، 1384. بررسی شیوع انگلی دستگاه گوارش مولدین قره برون در سواحل جنوب شرقی دریای خزر. گزارش نهایی طرح تحقیقاتی. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 28صفحه.
4
حق پرست، س.؛ آقایی مقدم، ع.؛ حاجی مرادلو، ع.؛ پهلونی، ه.؛ امینی، ک.؛ طاهری، ع. و محمدخانی، ح.، 1386. بررسی فراوانی انگل های کرمی دستگاه گوارش مولدین قره برون در سواحل جنوب شرقی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. سال 16، شماره 3، صفحات 55 تا 64.
5
ستاری. م.، 1381. بررسی شیوع آلودگی های انگلی داخلی ماهیان خاویاری صید شده از سواحل جنوب غربی دریای خزر. پایان نامه دکترای تخصصی بهداشت و بیماری های آبزیان. دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران. تهران، 280 صفحه.
6
غروقی. ا.، 1373. شناسایی انگل های کرمی لوله گوارش و خونی ماهی قره برون در سواحل جنوبی دریای مازندران با موسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران.
7
مازندرانی،م.و طاهری میرقائد، ع.، 1392.بررسی انگل های کرمی دستگاه گوارش مولدین تاس ماهی ایرانی (Acipenserpersicus) در سواحل جنوب شرقی دریای خزر. نشریه پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. دانشگاه گنبدکاووس. دوره 2، شماره 1، صفحات 23 تا 32.
8
مخیر. ب.، 1359، فهرست انگل های ماهیان خاویاری (تاس ماهیان Acipenseridae) ایران. پایان نامه دانشکده دامپزشکی. شماره 1، صفحات 1 تا 11.
9
موبدی. ا.، 1372، جزوه روش های مختلف نمونه برداری، فیکس کردن و رنگ آمیزی انگل های ماهیان گردآوری شده به وسیله کارشناسان اداره کل بهداشت و درمان و تغذیه آبزیان از برنامه تدریس انگل شناسی ماهیان. انتشارات معاونت و تکثیر شیلات و پرورش ایران.
10
Masoumzadeh, M.; Masoumian, M.; Sattari, M.; Shenavar Masouleh, A.; Jalilpour, J. and Bazari Moghaddam, S., 2005. Study on helminth parasites of Acipenser persicus broodfish caught in the southwest of the caspian sea (2002-2004) , international sturgeon Research institue. Extented Abstracts of 5 th international symposium sturgeon, Ramsar. pp: 130-132.
11
Schmidt, G.D. and Roberts, L.S., 1989. Fundation of parasitology. Fourtti edition. Times Mirror/Mosby college publishing. 750 p.
12
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه برخی از پارامترهای بیوشیمیایی و اسپرم شناختی فیل ماهی (1768 Huso huso Linnaeus) وحشی و پرورشی
طی این مطالعه که به مدت 2 ماه از فروردین تا اردیبهشت 1396 در مجتمع تکثیر و پرورش ماهیان خاویاری شهید مرجانیگرگان صورت پذیرفت خصوصیات حرکتی (طول دوره تحرک و درصد تحرک اسپرم)، اسپرماتوکریت، تراکم اسپرم و برخی از خصوصیات بیولوژیکی اسپرم شامل شاخص های پلاسمای سمینال (ترکیبات یونی و آلی) در 8 مولد وحشی و 8 مولد پرورشی مورد بررسی قرار گرفت. طول دوره تحرک اسپرم، درصد تحرک اسپرم، اسپرماتوکریت و تراکم اسپرم در فیل ماهی وحشی به ترتیب 61/65±310، 6/31±81/11، 0/31±2/33، 0/36±2/50 و در فیل ماهی پرورشی به ترتیب 34/61±170/43، 5/81±65/63، 0/23±2/26، 0/28±2/10 اندازه گیری شد. غلظت های یون سدیم، پتاسیم، کلسیم و منیزیم در فیل ماهی وحشی به ترتیب 9/47±99/36، 0/40±4/96، 0/44±7/57، 0/15±1/15 میلی مول در لیتر و در فیل ماهی پرورشی به ترتیب 10/40±98/29، 0/28±5/03، 0/47±7/76، 0/24± 2/12میلی مول در لیتر بود. غلظت کلسترول و گلوکز در فیل ماهی وحشی به ترتیب 8/77±49/33، 2/12±32/65 میلی گرم در دسی لیتر و در فیل ماهی پرورشی به ترتیب 4/78±47/47، 1/66±32/21 میلی گرم در دسی لیتر بود. هم چنین پلاسمای سمینال در فیل ماهی وحشی و پرورشی به ترتیب دارای 0/27±1/10، 0/29±1/33 گرم در دسی لیتر پروتئین بود. بررسی ها نشان داد که بین طول دوره تحرک، درصد تحرک اسپرم و میزان غلظت یون منیزیم در فیل ماهی وحشی و پرورشی اختلاف معنی داری وجود داشت.
http://www.aejournal.ir/article_93410_5ac78dee22410c2d76d4fa50e748796f.pdf
2019-07-23
169
172
فیل ماهی
پارامترهای اسپرم شناختی
پارامترهای بیوشیمیایی
مهدی
عادلی
mehdi.adeli1361@chmail.ir
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، واحد آزادشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، آزادشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
علی
صادقی
sadeghi.a_shilat@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
محمد رضا
ایمانپور
m.imanpoor@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
ابراهیم
مسعودی
masoudi@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
محمد
فرخی
farokhi@yahoo.com
5
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
AUTHOR
Alavi, S.M.H.; Cosson, J. and Kazemi, R., 2006. Semen characteristics in Acipencer persicus in relation to sequential stripping. Journal of Fish Biology. Vol. 22, pp: 400-405.
1
Alavi, S.M.H.; Mojazi, A.B.; Cosson, J.; Karami, M.; Pourkazemi, M. and Akhoundzadeh, M.A., 2006. Determination of some seminal plasms indices, sperm density and motility in the Persian sturgeon Acipenser persicus. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 5, pp: 19-40.
2
Barannikova, I.A., 1995. Measures to maintain sturgeon fisheries under conditions of ecosystem change. In: Proc. Intern. S turg. Symp., Vniro Pub. Vol. 12, pp: 124-130.
3
Billard, R., 2015. Spermatogenesis and spermatology of some teleost fish species. Reprod Nutr Dev. Vol. 2, pp: 877-920.
4
Billard, R.; Cosson, J.; Perchec, G. and Linhart, O., 2015. Biology of sperm and artificial reproduction in carp. Aquaculture. Vol. 124, pp: 95-112.
5
Billard, R., 2015. Biology and Control of Reproduction of Sturgeons in Fish Farm. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 2, pp: 1-20.
6
Ciereszko, A.; Glogowski, J. and Dabrowski, K., 2009. Biochemical characteristics of seminal plasma and spermatozoa of fresh water fishes. In: Tiersch TR, Mazik PM, editors. Cryopreservation in aquatic species. Louisiana: WAS, Baton Rouge. pp: 20-48.
7
Cosson, J. and Linhart, O., 1996. Paddlefish, Polyodon spathula, spermatozoa: effects of potassium and pH on motility. Folia Zool. Vol. 45, pp: 36-45.
8
Cosson, J.; Billard, R.; Cibert, C.; Dreanno, C.; Linhart, O. and Suquet, M., 1997. Movements of fish sperm flagella studied by high speed video microscopy coupled to computer assisted image analysis. Pol Arch Hydrobiol. Vol. 44, pp: 103-112.
9
Cosson, J.; Linhart, O.; Mims, S.D.; Shelton, W.L. and Rodina, M., 2000. Analysis of motility parameters from paddlefish and shovelnose sturgeon spermatozoa. Journal of Fish Biology. Vol. 56, pp: 1348-1367.
10
Fitzpatrick, J.L.; Henry, J.C.; Leily, N.R. and Devlin, R.H., 2005. Sperm characteristics and fertilization success of masculinize coho salmon Oncorhynchus kisutch. Aquaculture. Vol. 249, pp: 459-468.
11
García, A. and Díaz, M.V., 2015. Culture of Seriola dumerilii. Cah.Options Meditèrr. Vol. 16, pp: 103-114.
12
Morisawa, M.; Suzuki, K.; Shimizu, H.; Morisawa, S. and Yasuda, K., 2010. Effect of osmolality and potassium on motility of spermatozoa from freshwater cyprinidfishes. J Exp Zool. Vol. 107, pp: 95-103.
13
Primavera, J.H. and Quinitio, E.T., 2014. Runt-Deformity syndrome in cultured giant tiger prawn Penaeus Monodon. Journal of Crustacean Biology. Vol. 20, pp: 796-802.
14
Rideout, R.M.; Trippel, E.A. and Litvak, M.K., 2012. Relationship between sperm density, spermatocrit, sperm motility and spawning date in wild and cultured haddock. Journal of Fish Biology. Vol. 65, pp: 319-332.
15
Ronyai, A. and Varadi, L., 2007. The sturgeons. pp: 95-108. In Nash C.E. and Novotny, A.J., (eds.). Production of Aquatic Animals. Elsevier, Amsterdam.
16
Rurangwa, E.; Kime, D.E.; Ollevier, F. and Nash, J.P., 2014. Measurement of sperm motility and factors affecting sperm quality in cultured fish. Aquaculture. Vol. 234, pp: 1-28.
17
Secer, S.; Tekin, N.; Bozkurt, Y.; Bukan, N. and Akcay, S., 2004. Corrlation between biochemical and spermatological parameters in rainbow trout semen. Israil. Vol. 56, pp: 274-280.
18
Taghavi Motlagh, S.A., 2010. Population dynamics of sturgeon in the Southern Part of the Caspian Sea. PhD thesis. Univesity of Wales, Swansea, UK. 300 p.
19
Turner, E. and Montgomerie, R., 2002. Ovarian fluid enhances sperm movement in Arctic charr. Journal of Fish Biology. Vol. 60, pp: 1570-1579.
20
White, l. and Macleod, J., 2010.Composition and physiology of semen. pp: 135-172. In: Hartman, C.G., Mechanisms Concerned with Conception.Perrgamon Press, Lond.
21
22
ORIGINAL_ARTICLE
ﺗﺄﺛﻴﺮ ﺳﻄﻮح ﻣﺘﻔﺎوت ملاس چغندر جیره غذایی بر برخی پارامترهای ایمنی موکوس و شاخص های بیوشیمیایی سرم خون ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio)
در ﻣﻄﺎﻟﻌﻪ ﺣﺎﺿﺮ اﺛﺮات ﺳﻄﻮح ﻣﺨﺘﻠﻒ ملاس چغندر ﺑﺮ ﺑﺮﺧﯽ از ﻓﺎﮐﺘﻮرﻫﺎی اﯾﻤﻨﯽ ﻣﻮﮐﻮﺳﯽ، شاخص های بیوشیمیایی ﺧﻮن در ماهی کپور معمولی مورد بررسی قرار گرفت. در این آزمایش از 360 قطعه ماهی کپورمعمولی با میانگین وزنی 2/5±22 استفاده شد. بچه ماهی ها در 12مخزن به تعداد 30 قطعه در هر مخزن به طور تصادفی توزیع شد. پس از یک هفته آداپتاسیون، در یک دوره به مدت 8 هفته غذادهی انجام گرفت . آزمایش در قالب 4 تیمار و هر تیمار با 3 تکرار شامل: جیره فاقد ملاس (تیمار 1)، جیره حاوی 0/5 درصد ملاس (تیمار 2)، جیره حاوی 1 درصد ملاس (تیمار3) و جیره حاوی 2 درصد ملاس (تیمار 4) انجام شد و ماهی ها روزانه به میزان 3 درصد وزن بدن و دو بار در روز با جیره های آزمایشی تغذیه شدند. غذای گروه شاهد، غذای تجاری کپورمعمولی شرکت فرادانه بدون ملاس بود. نتایج نشان داد بعد از تغذیه با جیره حاوی ملاس مقدار پروتئین محلول موکوس افزایش معنی داری پیدا کرده است (0/05>P). بیش ترین مقدار پروتئین محلول موکوس هم در تیمار 2% ملاس بوده است. مقدار ایمنوگلوبین در تیمارها و گروه شاهد تغییر معنی داری پیدا نکرده است. هم چنین میزان آلکالین فسفاتاز موکوس در تیمارها نسبت به گروه شاهد دارای افزایش معنی داری در تیمار 1% ملاس بوده است (0/05>P). مقدار پروتئین محلول و هم چنین میزان فعالیت فسفاتاز قلیایی در سرم خون ماهی کپور افزایش معنی داری پیدا کرده است (0/05>P). هم چنین مقدار گلوکز سرم خون ماهی کپور مورد آزمایش با افزایش مقدار ملاس جیره افزایش پیدا کرده است (0/05>P).
http://www.aejournal.ir/article_93554_a8d83632baa9e19363ad8305fcf75bf2.pdf
2019-07-23
173
178
ملاس چغندر
ایمنی موکوس
سرم خون و کپورمعمولی
مصطفی
بیگی
beygimostafa392@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
عبدالمجید
حاجی مرادلو
ahajimoradloo@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سید حسین
حسینی فر
hossein.hoseinifar@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
علی
جافرنوده
a.jafar55@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
شریفیان، م.، 1392. تاثیر سطوح متفاوت ویتامین A بر خصوصیات ضدباکتریایی موکوس اپیدرم ماهی کلمه (Rutilus caspicus). مجله علوم و فنون شیلات. دوره 2، شماره 3، صفحات 59 تا 79.
1
ﮔﺎﻟﻮوﻳﻨﺎ،آ.وﺗﺮوﻣﺒﻴﺘﺴﻜﻲ،پ.،1989. ﻫﻤﺎﺗﻮﻟﻮژی ﻣﺎﻫﻴﺎن اﺳﺘﺨﺮی اﻳﺴﺘﮕﺎه ﺗﺤﻘﻴﻘﺎﺗﻲ ﻋﻠﻤﻲ و اﻗﺘﺼﺎدی ﻣﺎﻫﻴﺎن ﺟﻮان. ﻛﻴﺸﻴﻨﻴﻮو، مولداوی. 156 صفحه.
2
Bullis, R.A., 1993. Clinical pathology of temperate freshwater and estuarine fishes in: Fish Medicine. Stoskopf. pp: 232-239.
3
Cabello, F.C., 2006. Heavy use of prophylactic antibiotics in aquaculture: a growing problem for human and animal health and for the environment. Environmental Microbiology. Vol. 8, pp: 1137-1144.
4
Chandrasekaran, M. and Bahkali,A.H.,2013. Valorization of date palm (Phoenix dactylifera) fruit processing by-products and wastes using bioprocess technology ereview. Journal of Biological Science. Vol. 20, pp: 105-120.
5
Diane, W.C.; Ignacio, F.F.; Erkki, V.; Norman, C.S. and Thomas, J.C., 2003. Betaine improves growth, but does not induce whole body or hepatic palmitate oxidation in swine (Susscrofa domestica). Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 137, pp: 131-140.
6
Esteban, M.A., 2012. An overview of the immunological defenses in fish skin. ISRN Immunology. pp: 1-29.
7
FAO. 2002. The state of world fisheries and aquacultures. SOFIA, Rome, Italy. 150 p.
8
FIGIS. 2013. Fisheries Global Information System (FAO FIGIS) Web site. Fisheries Global Information System (FIGIS). FI Institutional Websites. In: FAO Fisheries and Aquaculture Department [online]. Rome.
9
Hernandez, L.H.H.; Barrera, T.C.; Mejia, J.C.; Mejia, G.C.; Del Carmen, M.; Dosta, M.; Del Lara Andrade, R. and Sotres, J.A.M., 2010. Effects of the commercial probiotic Lactobacillus casei on the growth, protein content of skin mucus and stress resistance of juveniles of the Porthole livebearer Poecilopsis gracilis (poecilidae). Aquaculture Nutrition. Vol. 16, pp: 407-411.
10
Hoseinifar, S.H.; Roosta, Z.; Hajimoradloo, A. and Vakili, F., 2015. The effects of Lactobacillus acidophilus as feed supplement on skin mucosal immune parameters, intestinal microbiota, stress resistance and growth performance of black swordtail (Xiphophorus helleri). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 42, pp: 533-538.
11
Lowry, O.H.; Rosebrough, N.J.; Farr, A.L. and Randall, R.J., 1951. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J of Biological Chemistry. Vol. 1951, pp: 193-265.
12
Nayak, S.; Swain, P. and Mukherjee, S., 2007. Effect of dietary supplementation of probiotic and vitamin C on the immune response of Indian Major Carp, Labeo rohita (Ham.). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 23, pp: 892-896.
13
Pohlenz, C. and Gatlin, D.M., 2014. Interrelationships between fish nutrition and health. Aquaculture. Vol. 431, pp: 111-117.
14
Raa, J., 1996. The use of immuno-stimulatory substances in fish and shellfish farming. Reviews in Fisheries Science. Vol. 4, No. 3, pp: 229-288.
15
Racicot, J.G.; Gaudet, M. and leray, C., 1975. Blood and liver enzymes in rainbow trout with emphasis on their diagnostic use: study of CCl4 toxicity and a case of Aeromonas infection. J. Fish Biol. Vol. 7, pp: 825-835.
16
Ringø, E.; Olsen, R.E.; Gifstad, T.Ø.; Dalmo, R.A.; Amlund, H.; Hemre, G.I. and Bakke, A.M., 2010. Prebiotics in aquaculture: a review. Aquaculture Nutrition. Vol. 16, pp: 117-136.
17
Ross, L.G. and Ross, B., 1999. Anasthetic and sedative techniques for aquatic animals. 2nd edn. Blackwell Science, Oxford, UK. pp: 22-57.
18
Ross, N.W.; Firth, K.J.; Wang, A.; Burka, J.F. and Jojnson, S.C., 2000. Changes in hydrolytic enzyme activities of Atlantic salmon skin mucus due to infection with the Salmon louse and cortisol implantation. Disease of Aquatic Organisems. Vol. 41, pp: 43-51.
19
Ross, N.W.; Firth, K.J.; Wang, A.; Burka, J.F. and Jojnson, S.C., 2000. Changes in hydrolytic enzyme activities of Atlantic salmon (Salmo salar) skin mucus due to infection with the Salmon louse (Lepeophtheirus salmonis) and cortisol implantation. Disease of Aquatic organisems. Vol. 41, pp: 43-51.
20
Roosta,Z.andHoseinifar,S.H.,2016. The effects of crowding stress on some epidermal mucus immune parameters, growth performance and survival rate of Tiger barb. Aquaculture Research. Vol. 47, pp: 1682-1686.
21
Sakai, M., 1999. Current research status of fish immunostimulants. Aquaculture. Vol. 172, pp: 63-92.
22
Shakoori, A.R.; Iqbal, M.J. and Mughal, A.L.,1996. Effect of sublethal doses of fenvalerate (a synthetic pyrethroid) administred continuousely for four weeks on the blood, liver and muscles of a freshwater fish (Ctenophayngodon idella). Bull. Environ. Contam. Toxical. Vol. 57, pp: 487-494.
23
Sheikhzadeh, N.; Karimi Pashaki, A.; Nofouzi, K.; Heidarieh, M. and Tayefi-Nasrabadi, H., 2012. Effects of dietary Ergosan on cutaneous mucosal immune response in Rainbow trout. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 32, pp: 407-410.
24
Sheikhzadeh, N.; Heidarieh, M.; Karimi Pashaki, A.; Nofouzi, K.; Ahrab Farshbafi, M. and Akbari, M., 2012b. Hilyses, Fermented Saccharomyces cerevisiae, enhances the growth performance and skin non-specific immune parameters in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 32, pp: 407-410.
25
Shirali, S.; Erfani Majd, N.; Mesbah, M. and Reza Seifi, M., 2012. Histological studies of common Carp ovarian development during breeding season in Khouzestan Province, Iran. World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 4, pp: 159-164.
26
Subramanian,S.;MacKinnon, Sh.L.andRoss, N.W., 2007. A comparative study on innate immune parameters in the epidermal mucus of various fish species. Comprative Biochemistry and Physiology. Vol. 148, pp: 256-263.
27
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر جایگزینی سطوح مختلف تفاله زیتون بر رشد و شاخص های خونی بچه ماهی کپورمعمولی Cyprinus carpio
هدف از مطالعه حاضر بررسی تأثیرات جایگزینی تفاله زیتون بر شاخص های خونی و رشد بچه ماهی کپورمعمولی Cyprinus carpioانجام پذیرفت. ماهی کپورمعمولی با میانگین وزنی 0/00±19/97 گرم و طول متوسط 0/49±10/05 سانتی متر با 6 جیره غذایی شامل سطوح صفر، 3، 6، 9، 12و 15 درصد تفاله زیتون به مدت 8 هفته در آکواریوم مورد تغذیه قرار گرفتند. غذادهی 3 بار در روز در حد سیری ماهیان صورت پذیرفت. پس از طی 57 روز از انجام آزمایش، نتایج نشان داد اختلاف معنی داری در سطح 6 درصد، بین شاخص های رشد از نظر وزن، طول، وزن به دست آمده، درصد افزایش وزن بدن، نرخ رشد ویژه، غذای مصرفی و شاخص کبدی مشاهده شد اما در شاخص احشاء اختلاف معنی دار نبود. پارامترهای خونی بچه ماهی کپورمعمولی نشان داد که در برخی شاخصها خونی شامل تعداد گلبول قرمز، هموگلوبین، هماتوکریت، مونوسیت و MCHC اختلاف معنیداری نبود اما در تعداد گلبول سفید، نوتروفیل، لنفوسیت،MCH وMCV اختلاف معنیداری مشاهده گردید. نتایج این تحقیق نشان دهنده تأثیر مثبت جایگزینی تفاله زیتون تا سطح 6 درصد بدون اثر منفی بر روی عملکرد رشد و فاکتورهای خونی، در جیره بچه ماهی کپور معمولی می باشد و می توان سطح 6 درصد را به عنوان سطح مناسب برای جایگزینی پیشنهاد کرد.
http://www.aejournal.ir/article_93609_416d145b72d704c6d3777a1ad9c244fc.pdf
2019-07-23
179
186
تفاله زیتون
تغذیه
رشد
کپور معمولی
فاطمه
کیاپاشا
fatemehkiapasha@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعهسرا، ایران، صندوق پستی: 1144
AUTHOR
مجید رضا
خوش خلق
khoshkholghmr@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعهسرا، ایران، صندوق پستی: 1144
LEAD_AUTHOR
بهرام
فلاحتکار
bfalahatkar@yahoo.com
3
گروه علوم دریایی، پژوهشکده حوضه آبی دریای خزر، دانشگاه گیلان، رشت، ایران، صندوق پستی: 1144
AUTHOR
حاجی زاده، آ.، 1381. بررسی دانه های روغنی در شرایط اقتصاد ملی. ماهنامه دانه های روغنی و روغن های گیاهی خوراکی. دوره 23، شماره 3، صفحات 11 تا 14.
1
خوش خلق،م.ر.؛ نویریان،ح.ع.؛ موسی پورشاجانی،م.؛ محمدی برسری، م. و سعیدعزیزی، م.، 1392. تأثیر سطوح مختلف غذایی تفاله زیتون در رشد، ترکیب لاشه و ارزیابی حسی ماهی قزلآلای رنگینکمان پرورشی Oncorhynchus mykiss. نشریه شیلات. دوره 66، شماره 2، صفحات 133 تا 143.
2
خوش خلق، م.؛ موسی پورشاجانی، م. و محمدی برسری، م.، 1395. بررسی امکان جایگزینی نسبی تفاله زیتون با برخی اقلام جیره در تغذیه ماهی قزلآلای رنگین کمان پرورشی .Oncorhynchus mykiss نشریه شیلات، دوره 69، شماره 2، صفحات 189 تا 200.
3
دلاوریان، ر.؛ آبرومند، ع.؛ ضیاعی نژاد، س. و جواهری بابلی، م.، 1393. اثرهای جایگزینی روغن ماهی جیره غذایی با روغن های گیاهی (روغن سویا و خرما) بر شاخص های رشد، تغذیه و بقاء در کپور معمولیCyprinus carpio. نشریه توسعه آبزی پروری. دوره 8، شماره 3، صفحات 43 تا 51.
4
رحمدل، ک.ج.؛ نویریان، ح.ع.؛ فلاحتکار، ب. و باباخانی، آ.، 1395. اثر جایگزینی آرد ماهی با کنجاله آفتابگردان بر رشد، شاخصهای خونی و بیوشیمیایی پلاسما در بچه ماهیان انگشت قد کپورCyprinus carpio. فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان. دوره 4، شماره 1، صفحات 50 تا 67.
5
میرنظامی ضیابری، س.ح.، 1377. خواص درمانی زیتون. نشریه دانش نگار. 81صفحه.
6
Anwar, A.; Ishak, MM.; El-Zeiny, M. and Hassanen, G.D.I., 1982. Activated sewage sludge as a replacement for bran-cotton seed meal mixture for carp, Cyprinus carpio L. Aquaculture. Vol. 28, No. 3-4, pp: 321-325.
7
AL-Asgah, N.A.; Younis, E.M.; Abdel-Warith, A.A.; EL KHaldy, A.A. and Ali, A., 2011. Effects of feeding olive waste on growth performance and muscle vomposition of Nile Tilapia (Oreochromis niloticus). International Journal of Agriculture and Biology. Vol. 13, No. 2, pp: 239-244.
8
Alyakrinskyaya, I.O. and Dolgova, S.N., 1984. Hematological features of young sturgeons. Vopr Ikhtiol. Vol. 4, pp: 135-139.
9
Bransden, M.P.; Carter, C.G. and Nowak, B.F., 2001. Effects of dietary protein source on growth, immune function, blood chemistry and disease resistance of Atlantic salmon (Salmo salar) parr. Animal Science. Vol. 73, No. 1, pp: 105-113.
10
Chiofalo, B.; Liotta, L.; Chiofalo, V. and Zumbo, A., 2002. La. sansa d’oliva nell’alimentazione degli ovini: effetto sulla composizione acidica del latte (olive cake for ewe feeding: effect on the milk acidic composition). In: Proceedings of the 15th National Congress of S.I.P.A.O.C., Cagliari, Italy. pp: 136-137.
11
Chilofalo, B.; Liotta, L.; Zumbo, A. and Chiofalo, V., 2004. Administration of olive cake for ewe feeding: effect on milk yield and composition. Small Ruminant Research. Vol. 5, No. 1-3, pp: 169-176.
12
Dal bosco, A.; Mourvaki, E.; Cardinali, R.; Servili, M.; Sebastiani, B.; Ruggeri, S.; Mattioli, S.; Taticchi, A.; Esposto, S. and Castellini, C., 2012. Effect of dietary supplementation with olive pomaces on the growth performance and meat quality of growing rabbits. Meat Science. Vol. 92, No. 4, pp: 783-788.
13
DelaHoz, L.; Ordofiez, J.A.; Asensio, M.A. and Cambero, M.I., Sanz, B., 1987. Effects of diets supplemented with olive oil bagasse or technical rendered fat on the apolar lipids and their fatty acid composition of trout (Salmo gairdneri) muscle. Aquaculture. Vol. 66, No. 2, pp: 149-162.
14
FAO. 2014. Fishery and Aquaculture Statistics Yearbook. FAO Publications, Italy. 103 p. www.fao.org.
15
FAO. 2015. Food and Agriculture Organization of the United Nation Statistics Division.
16
FAO. 2016. World food and agriculture. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome.
17
Harmantepe, F.B.; Aydin, F. and Doğan, G., 2015. The potential of dry olive cake in a practical diet for juvenile hybrid tilapia, Oreochromis niloticus × Oreochromis aereus. Aquaculture Nutrition. Vol. 10, No. 5, pp: 1-10.
18
Härdig, J. and Höglund, L.B., 1983. On accuracy in estimating fish blood vari ables. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Physiology. Vol. 75, No. 1, pp: 35-40.
19
Hardy, R.W., 2010. Utilization of plant proteins in fish diets: Effects of global demand and supplies of fish meal. Aquaculture Research. Vol. 41, No. 5, pp: 770-776.
20
Higgs, D.A.; Mc Bride, J.R.; Markert, J.R.; Dosanjh, B.S.; Plotnikoff, M.D. and Clarke, W.C., 1982. Evaluation of tower and candle rapeseed protein concentrate as protein supplements in practical dry diets for juvenile chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha). Aquaculture. Vol. 29, pp: 1-31.
21
Jahanbakhshi, A.; Imanpoor, M.; Taghizadeh, V. and Shabani, A., 2013. Hematological and serum biochemical indices changes induced by replacing fish meal with plant protein (sesame oil cake and corn gluten) in the great sturgeon (Huso huso). Comparative Clinical Pathology. Vol. 22, No. 26, pp: 1087-1092.
22
Jalili, R.; Tukmechi, A.; Agh, N.; Noori, F. and Ghasemi, A., 2013. Replacement of dietary fish meal with plant sources in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss); effect on growth performance, immune responses, blood indices and disease resistance. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 12, No. 3, pp: 577-591.
23
Jawad, L.; Al-Mukhtar, M. and Ahmed, H., 2004. The relationship between haematocrit and some biological parameters of the Indian shad, Tenualosa ilisha (Family Clupeidae). Animal Biodiversity and Conservation. Vol. 27, No. 2, pp: 47-52.
24
Kikuchi, K., 1999. Partial replacement of fish meal with corn gluten meal in diets for Japanese flounder (Paralichthys olivaceus). Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 30, No. 3, pp: 357-363.
25
Ladikos, D. and Lougovois, V., 1990. Lipid oxidation in muscle food: A review. Food Chemistery. Vol. 35, No. 4, pp: 295-314.
26
Ljubojevic, D.; Cirkovic, M.; Novakov, N.; Puvaca, N.; Aleksic, N.; Lujic, J. and Jovanovic, R., 2014. Comparison of meat quality of tench (Tinca tinca) reared in extensive and semi-intensive culture systems. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 30, pp: 50-57.
27
Ljubojevic, D.; Radosavljevic, V.; Puvaca, N.; Zivkov Balos, M.; Dorpevic, V.; Jovanovic, R. and Cirkovic, M., 2015. Interactive effects of dietary protein level and oil source on proximate composition and fatty acid composition in common carp (Cyprinus carpio L.). Journal of Food Composition and Analysis. Vol. 37, pp: 44-50.
28
Nasopoulou, C.; Smith, T.; Detopoulou, M.; Tsikrika, C.; Papaharisis, L.; Barkas, D. and Zabetakis, I., 2014. Structural elucidation of olive pomace fed sea bass (Dicentrarchus labrax) polar lipids with cardioprotective activities. Food Chemistry. Vol. 145, pp: 1097-1105.
29
Munker, R.; Hiller, E.; Glass, J. and Paquette, R., 2007. Modern hematology: biology and clinical management. Springer Science & Business Media. Vol. 864.
30
Richter, N.; Siddhuraju, P. and Becker, K., 2003. Evaluation of nutritional quality of moringa (Moringa oleifera Lam.) leaves as an alternative protein source for Nile tilapia (Oreochromis niloticus L.). Aquaculture. Vol. 217, No. 1-4, pp: 599-611.
31
Sansoucy, R., 1985. Olive by-products for animal feed. Food and Agriculture Org. Vol. 43.
32
Sicuro, B.; Barbera, S.; Dapra, F.; Gai, F.; Gasco, L.; Paglialonga, G.; Battista almegiano, G. and Vilella, S., 2010. The olive oil by-product in ‘rainbow trout Onchorynchusmykyss (Walbaum)’ farming: productive results and quality of the product. Aquaculture Research. Vol. 41, No. 10, pp: 475-486.
33
Shimeno, S.; Masumoto, T.; Hujita, T.; Mima, T. and Uenos, S., 1993. Alternative protein sources for fish meal in diets of young yellowtail. Bulletin of the Japanese Society of Scientific Fisheries. Vol. 59, No. 1, pp: 137-143.
34
Soivio, A. and Nikinmaa, M., 1981. Swelling of erythrocytes in relation to the oxygen affinity of the blood of the rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson. In: A.D. Pickering (Ed.), Stress and Fish, Academic Press, London. pp: 103-119.
35
Viola, S.; Mokady, S.; Rappaport, U. and Arieli, Y., 1982. Partial and complete replacement of fishmeal by soybean meal in feeds for intensive culture of carp. Aquaculture. Vol. 26, No. 3-4, pp: 223-236.
36
Weber, R.E. and Jensen, F.B., 1988. Functional adaptations in hemoglobins from ectothermic vertebrates. Annual Review of Physiology. Vol. 50, No. 1, pp: 161-179.
37
Yansari, A.T.; Sadeghi, H.; Ansari-Pirsarai, Z. and Mohammad-Zadeh, H., 2007. Ruminal dry matter and nutrient degradability of different olive cake by–products after Incubation in the Rumen Using Nylon Bag Technique. International Journal of Agriculture & Biology. Vol. 11, pp: 39-43.
38
Yildirim, O. and Guroy, D., 2015. Effects of dietary olive pomace meal levels on growth performance, feed utilization and bio-economic analysis of juvenile tilapia (Tilapia zillii). Romanian Biotechnological Letters. Vol. 20, No. 6, pp: 10982-10987.
39
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر تجویز خوراکی لاکتوفرین، بتا گلوکان و سیاه دانه بر شاخص های رشد و پارامترهای خونی و ایمنی در ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio)
به منظور مقایسه محرک های ایمنی گیاهی و شیمیایی، تاثیر تجویز خوراکی لاکتوفرین، بتاگلوکان و سیاه دانه بر شاخص های رشد، پارامترهای خونی و ایمنی در کپورمعمولی مورد مطالعه قرار گرفت. 300 قطعه بچه ماهی 0/02±3 گرمبه مدت 60 روز با غذای شاهد (بدون محرک ایمنی) و تیمارهای غذایی حاوی 20 میلی گرم لاکتوفرین، 10 میلی گرم بتاگلوکان و 50 میلی گرم پودر سیاه دانه در کیلوگرم غذا تغذیه شدند. براساس نتایج، بیشترین افزایش وزن، ضریب رشد ویژه و ضریب چاقی در تیمار گلوکان بهدست آمد. میزان بازماندگی در تمام تیمارها بیش تر از 80 درصد و بدون اختلاف معنی دار بین تیمارها بود (0/05>P). همه تیمارهای حاوی محرک ایمنی اختلاف معنی داری را از نظر ضریب تبدیل غذایی نسبت به تیمار شاهد نشان دادند (0/05>P). کم ترین ضریب تبدیل غذایی و بیش ترین نسبت کارایی پروتئین در تیمار گلوکان حاصل شد (0/05>P). بیش ترین تعداد گلبول های قرمز و سفید و بالاترین میزان هموگلوبین و هماتوکریت در تیمار گلوکان و کم ترین میزان در تیمار شاهد مشاهده گردید. بیش ترین و کم ترین میزان فعالیت آنزیم لیزوزیم نیز به ترتیب مربوط به تیمار گلوکان (38/18±5/0) و شاهد (19/05±3/0) بود. درحالی که درصد نوتروفیل و مونوسیت در تیمار گلوکان بیش ترین مقدار بود، بیش ترین درصد لنفوسیت (66/57±73/0) در تیمار لاکتوفرین مشاهده شد. درنتیجهدر مقایسه با دو محرک دیگر، بتاگلوکان می تواند به عنوان محرک رشد و ایمنی در ماهی کپورمعمولی استفاده شود.
http://www.aejournal.ir/article_93656_35c911a4c962a1e947872a1d4f0b220f.pdf
2019-07-23
187
196
ایمنی
سیاه دانه
لاکتوفرین
کپورمعمولی
بتاگلوکان
سپیده
حسین زاده
shosseinzadeh991@gmail.com
1
گروه شیلات، واحد قائم شهر، دانشگاه آزاد اسلامی، قائمشهر، ایران، صندوق پستی: 163
AUTHOR
معصومه
بحرکاظمی
bahr.kazemi@gmail.com
2
گروه شیلات، واحد قائم شهر، دانشگاه آزاد اسلامی، قائمشهر، ایران، صندوق پستی: 163
LEAD_AUTHOR
اسلاملو، خ.؛ فلاحتکار، ب.؛ یوکویاما، س. وعلیزاده، ع.،1392. اثر تغذیه با سطوح مختلف لاکتوفرین گاوی بر عملکرد رشد وفعالیت لایزوزیم سرم و موکوس تاس ماهی سیبری جوان (Acipenser baeri). مجله دامپزشکی ایران. دوره 12، شماره 1، صفحات 5 تا 16.
1
بادزهره، غ.؛ سلطانی، م.؛ شاه حسینی، غ.ر. و نفیسی بهابادی، م.، 1391. تاثیر بتاگلوکان بر رشد و بقا و کارایی واکسن ضد استرپتوکوکوزیس در ماهی قزل آلای رنگین کمان. مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 67، شماره 1، صفحات 11 تا 17.
2
حقیقی، م.، 1388. روش های آزمایشگاهی خون شناسی ماهی. انتشارات علمی آبزیان. 83 صفحه.
3
خدابخش، ا. و قبادی، ش.، 1392. تاثیر مخلوط پربیوتیک الیگوساکارید (Mos) و بتا 1 و 3 گلوکان بر شاخص های رشد بازماندگی و ترکیب لاشه بچه ماهی کپور علف خوار (Ctenopharyngodon idella). فصلنامه علوم تکثیر و آبزی پروری. دوره 1، شماره 1، صفحات 41 تا 54.
4
خدادادی، م.؛ پیغان، ر. و حمیدواری، ا.، 1391. بررسی تاثیر افزودنی خوراکی پودر سیر خام Allium sativum بر روی شاخص های رشد ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio). نشریه علوم درمانگاهی و دامپزشکی ایران. دوره 6، شماره 2، صفحات 17 تا 26.
5
رحیم نژاد، ص.؛ آق، ن.؛ کلباسی، م.ر. و خسروی، س.، 1390. تاثیر تجویز خوراکی لاکتوفرین بر برخی پاسخ های ایمنی غیراختصاصی ماهی قزل آلای رنگین کمان Oncorhynchus mykiss. مجله دامپزشکی ایران. دوره 7، شماره 3، صفحات 57 تا 64.
6
روفچائی،ر.؛ حسینی فرد، ح.؛ صیادبورانی، م. و مقصودیه کهن، ح.، 1391. بررسی اثرات گلوکان بر ایمنی، پارهای از شاخص های خونی و میکروبیوتای روده ای بچه ماهی سفید (Rutilus frisii kutum). مجله علمی شیلات ایران. دوره 21، شماره 3، صفحات 73 تا 84.
7
شیخ زاده، ن. و سلطانی، م.، 1388. مطالعه اثر اسانس اوکالیپتوس Eucalyptus globules بر برخی فاکتورهای ایمنی ماهی کپورمعمولی. مجله تحقیقاتی دامپزشکی. دوره 64، شماره 1، صفحات 47 تا 54.
8
ضیایی، ت.؛ محرری، ن. و حسین زاده، ح.، 1391. بررسی اثرات داروشناسی و سم شناسی سیاه دانه . فصلنامه گیاهان دارویی. دوره 2، شماره 42، صفحات 17 تا 42.
9
طافی، ع.ا. و مشکینی، س.، 1393. محرک های ایمنی و اهمیت آن ها در آبزی پروری. فصلنامه نظام مهندسی کشاورزی و منابع طبیعی. شماره 46، صفحات 48 تا 53.
10
علیشاهی، م.؛ سلطانی، م.؛ مصباح، م. و اسمعیلی راد، ا.، 1390. تاثیر تجویز خوراکی عصاره خار مریم Silybum marianum بر پاسخ های ایمنی ماهی کپورمعمولی. فصلنامه تحقیقات دامپزشکی. دوره 66، شماره 3، صفحات 255 تا 263.
11
علیشاهی، م.؛ قربانپورنجف آبادی، م.؛ نجف زاده، ح. و پشم فروش، م.، 1389. مطالعه اثرات ضدباکتریایی برخی عصاره های گیاهی علیه استرپتوکوکوس اینیایی و یرسینیا راکری و آئروموناس هیدروفیلا. مجله دامپزشکی ایران. دوره 6، شماره 2، صفحات 21 تا 30.
12
علیشاهی، م. و مصباح، م.، 1391. اثر عصاره دارواش و سیاه دانه بر بقاء فاکتورهای رشد و مقاومت در برابر عفونت با آئروموناس هیدروفیلا در ماهی طلایی. مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 67، شماره 3، صفحات 285 تا 290.
13
علیشاهی، م.؛ پورمهدی، م. و عبدی، ا.، 1391. مقایسه اثر برخی محرکهای ایمنی و عصارههای گیاهی بر فاکتورهای رشد و مقاومت ماهی برزم در برابر استرسهای محیطی. مجله دامپزشکی ایران. دوره 8، شماره 4، صفحات 59 تا 67.
14
علیشاهی، م.؛ حیدری، ب. و محمدیان، ب.، 1392. اثرات غلظت های سمی عصاره خام آلوئه ورا بر برخی شاخص های خونی و ایمنی و بافت های ماهی کپورمعمولی Cyprinus carpio. مجله شیلات. دانشکاه آزاد اسلامی واحد آزادشهر. سال 7، شماره 4، صفحات 73 تا 84.
15
فلاحتکار، ب.؛ سلطانی، م.؛ ابطحی، ب.؛ کلباسی، م.ر.؛ پورکاظمی، م. و یاسمی، م.، 1385. تاثیر ویتامین C بر برخی پارامترهای رشد، نرخ رشد، بازماندگی و شاخص کبدی در فیل ماهیان جوان پرورشی. مجله پژوهش و سازندگی. شماره 72، صفحات 98 تا 103.
16
کاظمی، ر.؛ پوردهقانی، م.؛ یوسفی جوردهی، ا.؛ یارمحمدی، م. و نصری تجن، م.، 1389. فیزیولوژی دستگاه گردش خون آبزیان و فنون کاربردی خون شناسی ماهیان. انتشارات بازرگان. 194 صفحه.
17
لطفی، م.؛ آق، ن.؛ شمسایی مهرجان، م.؛ ملک زاده، ر.؛ محمدی زاده، م. و صدیق جور، م.، 1390. بررسی اثر سطوح مختلف لاکتوفرین در جیره غذایی بر شاخص های رشد ماهی قزل آلای رنگین کمان Oncorhynchus mykiss. مجله تحقیقات منابع طبیعی تجدیدشونده. سال 2، شماره 1، صفحات 68 تا 77.
18
Ai,Q.; Mai, K.; Zhang, L.; Tan, B.; Zhang, W. and Xu, W., 2007. Effects of dietary β-1, 3 glucan on innate immune response of large yellow croaker (Pseudosciaena crocea). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 22, pp: 394-402.
19
Andrews, S.R.; Sahu, N.P. and Pal, A., 2009. Growth of Labeo rohita fingerlings: Effect of dietary mannan oligosaccharide, yeast extract, protein hydolysate and chlorella. Aquaculture Research. Vol. 41, pp: 61-69.
20
Ardo, L.; Yin, G.; Xu, P.; Varadi, L.; Szigeti, G. and Jeney, G., 2008.Chinese herbs (Astragalus membranaceus and Lonicera japonica) and boron enhance the non-specific immune response of Nile tilapia (Oreochromis nitloticus) and reistance against Aeromonas hydrophyla. Aquaculture. Vol. 275, pp: 26-33.
21
Blaxhall, P.C. and Daisley, K., 1973. Routine haematological methods for use with fish bloods. Journal of Fish Biology. Vol. 5, pp: 771-781.
22
Cook, M.T.; Hayball, P.J.; Hutchinson, W.; Nowak, B.F. and Hayball, J.D., 2003. Administration of a commercial immunostimulant preparation, Ecoactiva as a feed supplement enhances macrophase respiratory burst and the growth rate of snapper (Pagrus auratus), Sparidae (Bloch and Schneider) in winter. Fish Shellfish Immunology. Vol. 14, pp: 333-345.
23
Eliss, A.E., 1990. Lysozyme assay. In: Stolen J.S., Fletcher, D.P., Anderson, B.S. and Robertson, B. S.(eds). Techniques in Fish immunology. Fair Haven, N J, USA SOS Publication. pp:101-103.
24
Galina, J.; Yin, G.; Ardo, L. and Jeney, Z., 2009. The use of immunostimulating herbs in fish. An overview of research. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 35, No. 4, pp: 669-676.
25
Houston, A.H.; Dobric, N. and Kahurananga, R., 1996. The nature of hematological response in fish. Studies on rainbow trout Oncorhynchus mykiss exposed to stimulated winter, spring and summer conditions. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 15, pp: 339-347.
26
Irianto, A. and Austin, B., 2002. Probiotic in aquaculture. Fish Disease. Vol. 25, pp: 1-10.
27
Jaramillo, J.F. and Gatlin, D.M., 2004. Comparison of purified and practical diets supplemented with or without β glucan and selenium on resistance of hybrid striped bass (Morone chrysops* M. saxatilis) to Streptococcus iniae infection. World Aquaculture Society. Vol. 35, pp: 245-252.
28
Kakuta, I., 1996. Protective effect of orally administrated bovine lactoferrin against experimental infection of goldfish (Carassius auratus) with Ichthyophthirius multifiliis. Aquaculture Science. Vol. 44, pp: 427-432.
29
Kim, S.K. and Rajapakse, N., 2005. Enzymeatic production and biological activities of chitosan oligosaccharides (COS): a review. Carbohydrate Research. Vol.62, pp: 357-368.
30
Klontz, G.W., 1994. Fish hematology. In: Techiques in fish immunology. Stolen, J.S., Fletcher, T.C., Rowley, A.F., Kelikoff, T.C., Kaaraii. S.L. and Smith, S.A. (eds). Vol.3.SOS Publications. Fair Haven.New Jersey, USA. pp: 121-132.
31
Kumari, J.; Sahoo, P.K.; Swain, T.; Sahoo, S.K.; Sahu, B. and Mohanty, B.R., 2006. Seasonal variation in the innate immune parameters of the Asia cat fish Clarias batrachus. Aquaculture. Vol. 252, pp: 121-127.
32
Lin, S.; Pan, Y.; Luo, L. and Luo, L., 2011. Effects of dietary b-1, 3-glucan, chitosan or raffinose on the growth, innate immunity and resistance of koi (Cyprinus carpio koi). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 31, pp: 788-794.
33
Maqsood, S.; Samoon, M.H. and Singh, P., 2009. Immunomodulatory and Growth Promoting Effect of Dietary Levamisole in Cyprinus carpio fingerlings against the challenge of Aeromonas hydrophila. Turkish Journal of Fish and Aquatic Sciences. Vol. 9, pp: 111-112.
34
Muller, A.; Raptis, J.; Rice, P.J.; Kalbfleisch, J.H.; Stout, R.D.; Ensley, H.E.; Browder, W. and Williams, D.L., 2000. The influence of glucanpolymer structure and solution conformation on binding to (1_3)-β-D-glucan receptors in a human monocyte- like cell line, Glycobiology. Vol. 10, No. 4, pp: 339-346.
35
NRC (National Research Council, USA). 1993. Nutrient Requirements of fish. National Academy of sciences, Washington. 124 p.
36
Raa J., 1996. The use of immunostimulatory substance in fish and shellfish farming. Fisheries Science. Vol. 4, No. 3, pp: 229-288.
37
Rehulka, J., 2000. Influence of astaxanthin on growth rate, condition, and some blood indices of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Aquaculture. Vol.190, pp: 27-47.
38
Ren, T.; Koshio, S.; Ishikawa, M.; Yokoyama, S.; Micheal, F.R. and Uyan, Q., 2007. Influence of dietary vitamin C and bovine Lactoferin on blood chemistry and non specific immune responses of Japanese eel, Anguilla japonica. Aquaculture. Vol. 267, pp: 31-37.
39
Reverter, M.; Bontemps, N.; Lecchini, D.; Banaigs, B. and Sasal, P., 2014. Use of plant extracts in fish aquaculture as an alternative to chemotherapy: Current status and future Perspectives. Aquaculture. Vol. 433, pp: 50-61.
40
Shalaby, A.M; Khattab, Y.A. and Abdel Rahman, A.M., 2006. Effect of garlic (Allium sativum) and chloram phenicol on growth performance, physiological parameters and survival of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Journal of Venomous Animal Toxins Including Tropical Disease. Vol. 12, pp: 172-201.
41
Tomita, M.; Wakabayashi, H.; Shin, K.; Yamauchi, K.; Yaeshima, T. and Iwatsuki, K., 2008. Twenty-five years of research on bovine lactoferin applications. Biochimie. Vol. 10, pp: 1-6.
42
Walker, T.; Lin, C.; Yildirim- Aksoy M.; Shelby, R. and Klesius, P.H., 2007. Immune response and resistance to stress and Edwardsiella ictaluri challenge in channel catfish, Ictalurus pimctatus, fed diets containing commercial whole-cell yeast or yeast subcompanents. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 38, No. 1, pp: 24-35.
43
Yin, G.; Ardo, L.; Thompson, K.D.; Adams, A.; Jeney, Z. and Jeney, G., 2009. Chinese herbs (Astragalus radix) and (Ganoderma lucidum) enhance immune response of crap, Cyprinus carpio, and protection against Aeromonas hydrophila. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 26, pp: 140-145.
44
Yokoyama, S.; Koshio, S.; Takakura, N.; Oshida, K.; Ishikawa, M. and Gallardo-Cigarroa, F.J., 2006. Effect of dietary bovine Lactoferin on growth response, tolerance to air exposure and low salinity stress conditions in orange spotted grouper (Epineohelus coioides). Aquaculture. Vol. 255, pp: 507-513.
45
Yokoyama, S.; Koshi, S.; Takakura, N.; Oshida, K.; Ishikawa, M. and Gallardo- Cigarroa, F.J., 2005. Dietary bovine Lactoferin enhances tolerance to high temperature stress in Japanese flounder Paralichthys olivaceus. Aquaculture. Vol. 249, pp: 367-373.
46
Yoshida, T.; Kruger, R. and Inglis, V., 1995. Augmentation of non-specific protection in African catfish, Clariasgraiepinus (Bruchell), by the long-term oral administration of immune stimulants. Journal of Fish Diseases. Vol. 18, pp: 195-198.
47
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات سطوح مختلف اسیدآمینه گلیسین بر شاخص های رشد، غذاگیری، درصد بازماندگی و مقاومت در برابر تنش شوری در ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio)
هدف از تحقیق حاضر، بررسی اثرات اسیدآمینه گلیسین بر شاخص های رشد، غذا گیری و درصد بازماندگی در مواجهه با تنش شوری در بچه ماهیان ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) بود. به این منظور بچه ماهیان با میانگین وزن 0/18±15/64 گرم به چهار گروه تقسیم شدند و با جیره های حاوی صفر (گروه شاهد)، 0/5 (تیمار 1)، 1 (تیمار 2) و 1/5 (تیمار 3) درصد گلیسین به مدت 60 روز تغذیه شدند و سپس در معرض شوری 15ppt به مدت 72 ساعت قرار گرفتند. آزمایش در قالب طرح کاملاً تصادفی و تجزیه و تحلیل داده ها با استفاده از نرم افزارهای SPSS و Excel صورت گرفت. نتایج به دست آمده نشان داد اسیدآمینه گلیسین اثر معنی داری بر شاخص های رشد (وزن نهایی، شاخص وضعیت، نرخ رشد ویژه و ضریب تبدیل غذایی) نداشت (0/05<P). درصد افزایش وزن بدن به طور معنی داری تحت تاثیر اسیدآمینه گلسین قرار گرفت (0/05>P). هم چنین افزودن اسیدآمینه گلیسین به جیره غذایی باعث افزایش بقاء و مقاومت به تنش شوری در بچه ماهیان کپورمعمولی گردید. از این رو بر طبق نتایج حاصل از تحقیق حاضر، می توان این گونه نتیجه گیری نمود که افزودن اسیدآمینه گلیسین می تواند سبب افزایش درصد بقاء و بازماندگی بچه ماهیان کپو معمولی در مواجه با تنش شوری گردد.
http://www.aejournal.ir/article_93754_076a636302c60f7fda4a35e2d1b7621e.pdf
2019-07-23
197
204
گلیسین
کپور معمولی
شاخص های رشد
بازماندگی
تنش شوری
ولی اله
جعفری
v.jafari.sh110@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
سعید
نورقلی پور
gholipour@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
محمدرضا
ایمانپور
mrimanpoor@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سیدحسین
حسینی فر
hosseinifar@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
ایپکچی، م.، 1367. زیست شیمی عمومی. موسسه چاپ و انتشارات دانشگاه فردوسی (مشهد). جلد2. 472 صفحه .
1
پورعلی فشتمی، ح.ر.؛ یزدانی ساداتی، م.ع.؛ پیکران مانا، ن.؛ حافظیه، م. و دروی قاضیانی، س.، 1392. بررسی اثرات اسیدهای آمینه متیونین و لایزین بر شاخص های رشد، تغذیه و بازماندگی بچه تاس ماهیان ایرانی (persicus (Acipenser. مجله اقیانوس شناسی. دوره 16، شماره 4، صفحات 63 تا 75.
2
پیک موسوی، م.؛ بهمنی، م.؛ سواری، ا.؛ محسنی، م. و حقی، ن.، 1389 .بررسی سطوح مختلف اسیدآمینه متیونین بر فاکتورهای رشد و ترکیبات بدن بچه فیل ماهیان جوان ((Huso huso. نشریه دامپزشکی (پژوهش و سازندگی). شماره 89، صفحات 12 تا 19.
3
جباری، ا.؛ اکرمی، ر. و چیت ساز، ح.، 1396. اثر بتائین به عنوان جاذب غذا بر عملکرد رشد، بازماندگی، ترکیب شیمیایی بدن و مقاومت به استرس در بچه ماهی سفید (Rutilus frisii kutum). مجله علمی شیلات ایران. دوره 26، شماره 1، صفحات 83 تا 93.
4
عنایت غلامپور،ط.؛جعفری، و.؛ ایمانپور، م.ر. وکلنگی میاندره، ح.، 1395. تأثیر عصارة هیدروالکلی گیاه پنج انگشت (Vitex agnus castus L.) بر شاخص های رشد و نرخ بقاء در گورخر ماهی (Danio rerio). یافته های نوین در علوم زیستی. سال 3، شماره 4، صفحات 269 تا 278.
5
وثوقی، غ. و مستجیر، ب.، 1385. ماهیان آب شیرین. چاپ هفتم، تهران: انتشارات دانشگاه تهران. 317 صفحه.
6
Akrami, R.; Chitsaz, H.; Dashtian, S. and Razeghi, M., 2014. Single or combined effects of inulin and mannan oligosaccharide supplements on the growth performance, survival, body composition and salinity resistance of Kutum (Rutilus frisii kutum) fry. Fisher. Scie. and Technol. Vol. 2, No. 3, pp: 17-29.
7
Asadi, M.; Azari-Takami, G.H.; Sajjadi, M.; Moezi, M. and Niroomand, M., 2010. The effects of enriched Rotifers with Betaine and Concentrate diet supplemented by Betaine on the growth, survival and stress-resistance in Indian white shrimp larvae (Fenneropenaeus indicus). Iranian journal of fisheries. Vol. 3, pp:1-10.
8
Azimirad, M.; Farhangi, M.; Mojazi-Amiri, B.; Effatpanah, I. and Mansouri Taee, H., 2013. Effects of different levels of betaine supplementation in diet on growth, feed efficiency indices and survival rate of pikeperch (Sander luciopreca) larvae. Iranian journal of fisheries. Vol. 66, No. 3, pp: 347-358.
9
Belghit, I.; Skiba-Cassy, S.; Geurden, I.; Dias, K.; Surget, A.; Kaushik, S.; Panserat, S. and Seiliez, I., 2014. Dietary methionine availability affects the main factors involved in muscle protein turnover in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Brit. J. of Nutri. Vol. 112, pp: 493-503.
10
Cahu, C.L.; Zambonino Infante, J.L. and Barbosa, V., 2003. Effect of dietary phospholipid level and phospholipid: neutral lipid value on the development of seabass (Dicentrarchus labrax) larvae fed a compound diet. British Journal of Nutrition. Vol. 90, pp: 21-28.
11
Eklund, M.; Bauer, E.; Wamatu, J. and Mosenthin, R., 2005. Potential nutritional and physiological functions of betaine in livestock. Nutr. Res. Rev. Vol. 18, pp: 31-48.
12
Fang, Y.Z.; Yang, S. and Wu, G., 2002. Free radicals, antioxidants, andnutrition. Nutrition. Vol. 8, pp: 872-879.
13
Fatahi, S.; Sudagar, M.; Mazandarani, M. and Khani, F., 2015. Growth, feeding factors and the effect of salinity stress on thesurvival rate on roach (Rutilus rutilusca spicus) juveniles fed with different levels of betaine and tryptophan. Iranian journal of fisheries. Vol. 4, No. 2, pp: 65-77.
14
Gan, L.; Lio, Y.J.; Tian, L.; Yang, H.; Yue, Y.; Chen, Y.; Liang, J.J. and Liang, G.Y., 2012. Effect of dietary protein reduction with lysine and methionnine supplementation on growth performance, body composition and total ammonia nitrogen excretion of juvenile grass carp, Ctenopharyngodon idella. Aquaculture Nutrition. Vol. 18, pp: 589-598.
15
Hoseini, S.M.; Hosseini, S.A. and Soudagar, M., 2010. Dietary tryptophan changes serum stress markers, enzyme activity, and ions concentration of wild common carp (Cyprinus carpio) exposed to ambient copper. Fish Phys. and Biochem. Vol. 38, pp: 1419-1426.
16
Jobling, M.; Gomes, E. and Dies, J., 2001. Feed types, manufacture and ingredients. In: FoodIntake in fish. (eds D. Houlihan, T. Boujard and M. Jobling). Blackwell Science, Oxford. pp: 25-48.
17
Lee, P. and Mayers, S., 1996. Chemoattraction and feeding stimulation in crustaceans. Aquaculture Nutrition. Vol. 2, pp: 157-164.
18
Li, P.; Mai, K.; Trushenski, J. and Wu, G., 2009. New developments infish amino acid nutrition: towards functional and environmentally oriented aquafeeds. Amino Acids. Vol. 37, pp: 43-53.
19
Mohseni, M.; Pourkazemi, M.; Seyed Hassani, M. and Pourali, H., 2016. Effects of different dietary betaine supplementation levels on the growth, carcass compositions and some haematological- biochemical parameters of the blood serum in juvenile beluga (Huso huso). J. jair. Gonbad. Vol. 4, No. 3, pp: 65-80.
20
Niroomand, M.; Sajjadi, M.; Yahyavi, M.; Asadi, M., 2011. The impact of different levels of Betaine on growth factors of ration, survival, the chemical composition of the body and the resistance of the rainbow trout (Oncorhynchos mykiss) fry. Iran. J. of fisher. Vol. 1, pp: 135-146.
21
Park, B., 2006. Amino acid imbalance-biochemical mechanism and nutritional aspects. Asian Australas.J. Anim. Sci. Vol. 19, pp: 13-21.
22
Polat, A. and Beklevik, G., 1999. The importance of betaine and some attractive substances as fish feed additives, In: Feed Manufacturing in the Mediterranean Regiaon: Recent Advances in Research and Technology Zaragoza (Brufu, J. and Tacon, A., eds), Ciheam, Iamz, Spain. pp: 217-220.
23
Soleimani, N.; Hoseinifar, S.H.; Merrifield, D.L.; Barati, M. and Abadi, Z.H., 2013. “Dietary supplementation of fructooligosaccharide (FOS) improves the innate immune response, stress resistance, digestive enzyme activities and growth performance of caspian roach (Rutilus rutilus) Fry.” Fish and Shellfish Immunology. Vol. 32, No. 2, pp: 316-321.
24
Tacon, A.G., 1990 . Standard methods for the nutrition and feeding of farmed fish and shrimp. Feeding Methods. Agent Laboratories Press, Redmond. Taoka. 30 p.
25
Virtannen, E.; Hole, R.; Resink, J.W.; Slinning, K.E. and Junnia, M., 1994. Betaine/ amino acid additive enhances the seawater performance of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fed standard fish-meal- based diets. Aquaculture. Vol. 124, No. 22, pp: 17-28.
26
Wang, W.; Wu, Z.; Dai, Z.; Yang, Y.; Wang, J. and Wu, G., 2013. Glycine metabolism in animals and humans: implications for nutrition and health. Amino Acids. Vol. 1, No. 15, pp: 1-14.
27
Wu, G.; Bazer, F.W.; Burghardt, R.C.; Johnson, G.A.; Kim, S.W.; Knabe, D.A.; Li, P.; Li, X.; McKnight, J.R. and Satterfield, M.C., 2011. Proline and hydroxyproline metabolism: implications for animal and human nutrition. Amino Acids. Vol. 40, pp: 1053-1063.
28
Wu, G.; Wu, Z.; Dai, Z.; Yang, Y.; Wang, W.; Liu, C.; Wang, B.; Wang, J. and Yin, Y., 2012. Dietaryrequirements of nutritionally non-essential amino acids by animals and humans. Amino Acids. Vol. 1, No. 7, pp: 15-24.
29
Yang, H.; Liu, Y.; Tian, L.; Liang, G. and Lin, H., 2010. Effects of supplemental lysine and methionine on growth performance and body composition for Grass Carp (Ctenopharyngodon idella). Americ. J. Agri. and Biol. Scie. Vol. 5, No. 2, pp: 222-227.
30
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثرات فلز سنگین مس بر برخی شاخص های فیزیولوژیکی ماهی فیتوفاگ پرورشی (Hypophthalmichthys molitrix)
در این تحقیق، به منظور تعیین سمیت حاد فلز سنگین مس بر برخی شاخص های خونی و بیوشیمیایی ماهی فیتوفاگ، 270 قطعه ماهی در مجاورت غلظتهای 0، 5 و 10 میلی گرم در لیتر نیترات مس (Cu(No3)2) قرار گرفتند. نمونه برداری از ماهیان در زمان های 12، 24، 48، 72 و 96 ساعت انجام شد. همه ماهیان در مجاورت غلظت 10 میلی گرم در لیتر پس از 12 ساعت و در مجاورت 5 میلی گرم در لیتر پس از 24 ساعت تلف شدند و میزان 50 LC در 24 ساعت آن 2/5 میلی گرم در لیتر تعیین گردید. نتایج نشان داد که درصد هماتوکریت (Hct) با افزایش غلظت مس و با گذشت زمان افزایش یافت(0/05>p). سطوح هموگلوبین (Hb)، تعداد گلبولهای سفید (WBC)، میانگین غلظت هموگلوبین ذره ای (MCHC) و میانگین هموگلوبین ذره ای (MCH) به طور معنی داری از ساعت صفر تا ساعت 24 کاهش یافت (0/05>p). نتایج شمارش افتراقی گلبول های سفید نشان داد که با افزایش غلظت مس و با گذشت زمان، تعداد لنفوسیتها کاهش و تعداد نوتروفیل ها و مونوسیتها افزایش یافت (0/05>p). تغییرات سطوح تریگلیسرید در زمان 24 ساعت بین تیمار 5 میلی گرم در لیتر و شاهد اختلاف معنی داری نشان داد (0/05>p)، ولی سطوح کلسترول فاقد اختلاف معنی دار بود. سطوح گلوکز و آلبومین پلاسمای خون با افزایش غلظت نیترات مس در زمان 12 و 24 ساعت به طور معنی داری تغییر کرد (0/05>p). سطوح پروتئین کل در زمان 24 ساعت در تیمار 5 میلی گرم در لیتر نسبت به شاهد کاهش معنی داری را نشان داد (0/05>p). براساس نتایج حاصل، شاخص های خونی فاکتورهای حساس در پایش سمیت مس و استرس ناشی از آن به ویژه در غلظت های مورد مطالعه، می باشند.
http://www.aejournal.ir/article_93918_1a70f5d386b342f3fec2222f16022fae.pdf
2019-07-23
205
214
مس
شاخص های خونی
شاخص های بیوشیمیایی
فیتوفاگ
محمد جواد
سپاهی
sepahijavad@yahoo.com
1
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
دل آرام
نخبه زارع
delaram.zare@gmail.com
2
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
رها
فدایی راینی
fadaimahdiye@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده مهندسی منابع طبیعی، دانشگاه جیرفت، جیرفت، ایران
AUTHOR
امینی رنجبر، غ.، 1373. بررسی میزان تجمع فلزات سنگین در رسوبات تالاب انزلی. مجله علمی شیلات ایران. سال 3، شماره 3، صفحات 5 تا 26.
1
جاویدگلشن آباد، ع.؛ تقوی جلودار، ح.؛ امجدی، م. و فضلی، ح.،1394. بررسی غلظت فلزات سنگین (آهن، روی، مس و کادمیم) در بافت های مختلف ماهی کلمه (Rutilus rutilus caspicus) در نواحی جنوبی دریای خزر. تحقیقات دامپزشکی و فرآورده های بیولوژیک (پژوهش و سازندگی). دوره 28، شماره 2، صفحات 9 تا 16.
2
جلالی، ب. و آقازاده، م.، 1385. مسمومیت ماهیان در اثر فلزات سنگین و اهمیت آن در بهداشت عمومی. انتشارات کتاب. 36 صفحه.
3
رستمی بشمن، م.؛ سلطانی، م. و ساسانی، ف.، 1379. مطالعه اثرات هیستوپاتولوژی برخی از فلزات سنگین (سولفات مس، سولفات روی و سولفات جیوه، کلرور کادمیوم) بر بافت های ماهی کپورمعمولی. مجله تحقیقات دامپزشکی (دانشگاه تهران). دوره 55، شماره 4، صفحات 1 تا 3.
4
رستمی بشمن، م. و سلطانی، م.، 1388. مطالعه اثرات بافتی دوز مزمن سولفات مس بر برخی اندام های ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio). مجله تحقیقات دامپزشکی (دانشگاه تهران). دوره 64، شماره 3، صفحات 193 تا 198.
5
شریف فاضلی، م.؛ ابطحی، ب. و صباغ کاشانی، آ.، 1384. سنجش تجمع فلزات سنگین سرب، نیکل و روی در بافت های ماهی کفال طلایی (Liza auratus) سواحل جنوبی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. دوره 14، شماره 1، صفحات 65 تا 78.
6
فتح الهی، ر.؛ خارا، ح.؛ پژند، ذ.؛ شناورماسوله، ع.ر.؛ حلاجیان، ع.و مشتاقی، ب.، 1389. تعیین غلظت کشندگی (LC5096h) کلرید سدیم و اثرات آن بر بافت آبشش بچه تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus). نشریه علوم زیستی. دوره 4، شماره 3، صفحات 65 تا 72.
7
فرهنگی، م. و حاجی مرادلو، ع.، 1386. علایم بالینی و اثرات آسیب شناسی مسمومیت حاد با آمونیاک در قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). نشریه شیلات. دوره 1، شماره 4، صفحات 72 تا 79.
8
کاظمی، ر.؛ پوردهقانی، م.؛ یوسفی جوردهی، ا.؛ یارمحمدی، م. و نصری تجن، م.، 1389. فیزیولوژی دستگاه گردش خون آبزیان و فنون کاربردی خون شناسی ماهیان. انتشارات بازرگان. 194 صفحه.
9
ناجی، ط.؛ صفاییان، ش.؛ رستمی بشمن، م. و صبرجو، م.، 1386. بررسی اثرات سولفات روی بر بافت آبشش بچه ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). نشریه علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 9، شماره 2، صفحات 29 تا 36.
10
وثوقی، غ.م.؛ شاهسونی، د. و پیغان، ر.، 1376. بررسی فاکتورهای خونی ماهی حوض (Carassius auratus). مجله تحقیقات دامپزشکی (دانشگاه تهران). دوره 52، شماره 4، صفحات 36 تا 42.
11
Ahmadifar, A.; Akrami, R.; Ghelichi, A. and Mohammadi Zarejabad, A., 2010. Effects of different dietary prebiotic inulin levels on blood serum enzymes, hematologic, and biochemical parameters of great sturgeon (Huso huso) juveniles. Comparative Clinical Pathology. Vol. 20, No. 5, pp: 447-451.
12
Bolasina, S.L., 2006. Cortisol and hematological response in Brazilian codling, Urophycis brasiliensis (Pisces, Phycidae) subjected to anesthetic treatment. Aquaculture International Journal. Vol. 14, pp: 569-575.
13
Bani, A. and Haghi Vayghan, A., 2009. Temporal variations in haematological and biochemical indices of the Caspian kutum, Rutilus frisii kutum. Ichthyological Society of Japan. pp: 126-133.
14
DePedro,N.;Guijarro,A.E.;Lopez-Patino,M.A.; Marinez Alvarez, R. and Delgado Daily, M., 2005. Seasonal variation in hematological and blood biochemical parameters in Tench (Tinca tinca). Aguac Res. Vol. 36, pp: 185-196.
15
Dick, P.T. and Dixon, D.G., 1985. Changes in circulating blood cell levels of rainbow trout, Salmo gardener, following acute and chronic exposure to copper. Journal Fish Biology. Vol. 26, pp: 475-480.
16
Emad, H.; Abou, E.N.; Khalid, M.; Moselhy, E. and Mohamed, A.H., 2005. Toxicity of cadmium and cooper and their effect on some biochemical parameters of marine fish Mugil seheli. Egyptian Journal of Aquatic Research. Vol. 31, pp: 60-71.
17
Gale, L.; Wixson, B.G. and Hardy, M.G., 1998. Aquatic organisms and heavy metals Miseries new lead belt. Water Research Bull. Vol. 9, pp: 673-688.
18
Georgieva, E.; Arnaudov, A. and Velcheva, I. 2010. Clinical, Hematological and Morphological studies on ex situ induced copper intoxication in crucian carp (Carassius gibelio). Journal Central European Agriculture. Vol. 11, No. 2, pp: 165-172.
19
Gioda, C.R.; Lissner, L.A.; Pretto, A.; da Rocha, J.B.T.; Schetinger, M.R.C.; Neto, J.R.; Morsch, V.M. and Loro, V.L., 2007. Exposure to sub lethal concentrations of Zn (II) and Cu (II) changes biochemical parameters in Leporinus obtusidens. Vol. 98, pp: 170-175.
20
Gopal, V.; Parvathy, S. and Balasubra, P.R., 1997. Effect of heavy metals on the blood protein biochemistry of the fish Cyprinus carpio andits use as a bio-indicator of pollution stress. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 48, pp: 117-124.
21
Gul, Y.; Gao, Z.X.; Qian, X.Q. and Wang, W.M., 2011. Hematological and serum biochemical characterization and comparison of wild and cultured northern snakehead (Channa argus Cantor, 1842). Journal Applied Ichthyology. Vol. 27, pp: 122-128.
22
Hoseini, S.M. and Ghelichpour, M., 2010. Efficacy of clove solution on blood sampling and hematological study in Beluga, Huso huso (L.). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 38, No. 2, pp: 493-498.
23
Klontz, G.W., 1994. Fish Hematology. In: Techniques in Fish Immunology, SOS Publications, and USA. Vol. 2, pp: 121-132.
24
Lodhi, H.S.; Khan, M.A.; Verma, R.S. and Sharma, U.D., 2006. Acute toxicity of copper sulphate to fresh water prawns. Journal Environmental Biology. Vol. 27, pp: 585-588.
25
Mazon, A.F.; Monteiro, E.A.; Pinheiro, G.H. and Fernandez, M.N., 2002. Hematological and physiological changes induced by short-term exposure to copper in the freshwater fish, Prochilodus scrofa. Brazilian Journal of Biology. Vol. 62, pp: 621-631.
26
Mikryakov, V.R.; Balabanova, L.V. and Mikryakov, D.V., 2009. The Reaction of Leukocytes of Sterlet, Acipenser ruthenus Hormone Induced Stress. Journal of Ichthyology. Vol. 49, No. 7, pp: 540-543.
27
Murad, A. and Houston, A.H., 1997. Leucocytes and leucopoietic capacity in goldfish, Carassius auratus, exposed to sub lethal levels of cadmium. Aquat Toxicol. Vol. 13, pp: 141-154.
28
Nussey, G.; Van Vuren, J.H.J. and Du Preez, H.H., 1995. Effect of copper on the differential white blood cell counts of the Mozambique tilapia (Oreochromis mossambicus). Comp. Biochem. Physiol. Vol. 111, pp: 381-388.
29
Satheeshkumar, P.; Ananthan, G.; Senthilkumar, D. and Jeevanantham, K., 2010. Comparative investigation on hematological and biochemical studies on wild marine teleost fishes from Vellar estuary, southeast coast of India. Journal of Comparative Clinical Pathology. Vol. 10, pp: 1091-1095.
30
Serezli Akhan, S. and Delihasan, F., 2011. Acute effects of copper and lead on some blood parameters on Coruh trout (Salmo coruhensis). African Journal of Biotechnology. Vol. 10, pp: 3204-3209.
31
Shah, S.l. and Altindag, A., 2005. Alternation of immunological parameters of tench (Tinca tinca) after acute and chronical exposure to lethal and sub lethal treatments with mercury, cadmium and lead. Tur Vetand Ani Sciences. Vol. 29, pp: 1163-1168.
32
Singh, D.; Nath, K.; Trivedi, S.P. and Sharma, Y.K., 2008. Impact of copper on haematological profile of freshwater fish, Channa punctatus. Journal of Environmental Biology. Vol. 29, pp: 253-257.
33
Tavares-Dias, M. and Moraes, F.R., 2007. Hematological and biochemical reference intervals for farmed channel catfish. Journal of Fish Biology. Vol. 71, pp: 383-388.
34
Theodorakis, C.W.; D'Surney, S.J.; Bickham, J.W.; Lyne, T.B.; Bardley, B.P.; Hawkins, W.E.; Farkas, W.L.; Mc. Carthy, J.F. and Shugart, L.R., 1992. Ecotoxicology. Vol. 1, pp: 45-73.
35
Viella, S.; Ingrossi, L.; Lionetto, M.; Schettino, T.; Zonno, V. and Stroelli, C., 1999. Effect of cadmium and zinc on the Na/H exchanger on the brush 34 B.K. Hassan border membrane vesicles isolated from eel kidney tankular cells. Toxicol. Vol. 48, pp: 25-36.
36
Weiguang, L. and Chen, N., 1995. Acute toxicity of Hg, Cu, Cd, Zn to larvae of red sea bream, Chrysophrys major. Journal of marine science. Vol. 20, pp: 1000- 1015.
37
World health organization (W.H.O). 1988. Gide line fur drinking water quality, Recommendation, W.H.O. Geneva, Switzerland. 130 p.
38
Witeska, M., 2005. Stress in fish- hematological and immunological effects of heavy metals. Electronic Journal of Ichthyology. Vol. 1, pp: 35-41.
39
Xiaoyun, Z.; Mingyun, L.; Khalid, A. and Weinmin, W., 2009. Comparative of hematology and serum biochemistry of cultured and wild Dojo loach, Misgrurnus anguillicadatus. Fish Physiology Biochemistry. Vol. 35, pp: 435-441.
40
Yilmaz, M.; Selami, A. and Ferhat, D., 2011. Metal accumulation in sediment, water, and freshwater fish in a Dam Lake. Toxicological and Environmental Chemistry. Vol. 94, pp: 49-55.
41
Yousefi, M.; Abtahi, B. and Abdian Kenari, A., 2011. Hematological, serum biochemical parameters, and physiological responses to acute stress of Beluga sturgeon (Huso huso) juveniles fed dietary nucleotide. Comparative Clinical Pathology. Vol. 21, No. 5, pp: 1043-1048.
42
Zhou, X.; Li, M.; Abbas, Kh. and Wang, W., 2009. Comparison of hematology and serum biochemistry of cultured and wild Dojo loach Misgurnus anguillicaudatus. Fish Physiology Biochemistry. Vol. 35, pp: 435-441.
43
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات مولتی آنزیم ناتوزیم در جیره غذایی بر شاخص های رشد، بازماندگی و عملکرد تولیدمثلی ماهی قرمز (Carassius auratus gibelio)
افزودن ترکیبات مختلف آنزیم ها به جیره غذایی یک راه بالقوه برای بهبود ارزش غذایی مواد مغذی است. مولتیآنزیم ناتوزیم دارای پروتئاز، لیپاز، فیتاز، آلفا آمیلاز، سلولاز، آمیلوگلوکوسیداز، بتاگلوکاناز، پنتوسوناز، همی سلولاز، زایلاناز، پکتیناز، اسیدفسفاتاز و اسیدفیتاز است، بنابراین به نظر می رسد جهت افزایش قابلیت هضم، از بین بردن عوامل ضد تغذیه ای و درنتیجه بهبود شاخصهای رشد و عملکرد تولیدمثلی ماهی قرمز (Carassius auratus gibelio) میتوان از مولتیآنزیم ناتوزیم استفاده کرد و بهطورکلی وضعیت تغذیه را بهبود بخشید. هدف از این آزمایش استفاده از مولتی آنزیم ناتوزیم در جیره غذایی ماهی قرمز و بررسی اثرات آن بر شاخص های رشد، بازماندگی و عملکرد تولیدمثلی است. جهت انجام این آزمایش از ماهیانی با میانگین وزنی 0/03±5/56 گرم استفاده شد و مولتیآنزیم ناتوزیم پلاس® (بیوپروتون، استرالیا) در 5 تیمار 0، 250، 500، 750 و 1000 میلی گرم بر کیلوگرم غذا، به جیره غذایی اضافه شد. این مولتی آنزیم در سطح آنزیمی 1 (250 میلیگرم بر کیلوگرم جیره غذایی) بهترین افزایش وزن، نرخ رشد ویژه، ضریب تبدیل غذایی، درصد افزایش وزن بدن و راندمان پروتئین را ایجاد کرد که با گروه شاهد تفاوت معنی دار داشت (0/05>P) اما بر درصد بازماندگی تاثیری نداشت (0/05<P). مولتی آنزیم ناتوزیم در سطح آنزیمی 2 (500 میلیگرم بر کیلوگرم جیره غذایی) بالاترین میزان شاخص گنادوسوماتیک، هماوری، درصد لقاح و بازماندگی لاروی را ایجاد کرد که با گروه شاهد دارای تفاوت معنی دار بودند (0/05>P) اما این مولتی آنزیم در هیچ یک از گروه های آزمایش تاثیری بر قابلیت تفریخ و درصد تحرک اسپرم نداشت (0/05<P). پیشنهاد می گردد از این مولتی آنزیم در جیره غذایی ماهیانی که ارزش اقتصادی بالایی دارند، استفاده شود و عملکرد رشد و تولیدمثلی ماهی را بهبود بخشند.
http://www.aejournal.ir/article_93964_23104f801fee134b71ea6533838cb13d.pdf
2019-07-23
215
224
شاخص های رشد
عملکرد تولیدمثلی
مولتی آنزیم ناتوزیم
ماهی قرمز (Carassius auratus gibelio)
مهرداد
عادلیان
mehrdad20ad@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
ایمانپور
mrimanpoor@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
ولی اله
جعفری
vjafari110@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
ایمان پور، م.ر. و زادمجید، و.، 1388. مقدمه ای بر تکثیر ماهیان. انتشارات دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 190 صفحه.
1
تبریزی، م.؛ نجاتی، م.؛ نوتاش، ش. و میرزایی، ح.، 1390. تأثیر سطوح مختلف مولتیآنزیم بر عملکرد و میزان بقاء ماهیان قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchusmykiss). مجله دامپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی واحد تبریز. دوره 5، شماره 1، صفحات 1110 تا 1103.
2
عادلیان، م.؛ ایمان پور، م.؛ تقی زاده، و. و مازندرانی، م.، 1392. استفاده از مولتیآنزیم کمین در جیره غذایی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) و تأثیر آن بر شاخص گنادوسوماتیک (GSI) . دومین همایش ملی شیلات و آبزیان ایران. دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس.
3
عادلیان، م.؛ ایمان پور، م.؛ تقی زاده، و. و مازندرانی، م.، 1392. استفاده از مولتیآنزیم ناتوزیم در جیره غذایی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) و تأثیر آن بر شاخص گنادوسوماتیک (GSI) . دومین همایش ملی شیلات و آبزیان ایران. دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس.
4
عادلیان، م.؛ ایمان پور، م.؛ تقی زاده، و. و مازندرانی، م.، 1395.استفاده از مولتی آنزیم کمین در جیره غذایی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) و اثرات آن بر شاخص های رشد و برخی از فاکتورهای بیوشیمیایی خون. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 8، شماره 1، صفحات 201 تا 206.
5
عادلیان، م.؛ ایمان پور، م.؛ تقی زاده، و. و مازندرانی، م.، 1395. استفاده از مولتی آنزیم ناتوزیم در جیره غذایی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) و اثرات آن بر شاخص های رشد و برخی از فاکتورهای بیوشیمیایی خون. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 8، شماره 2، صفحات 207 تا 214.
6
Ai, Q.; Kangsen, M.; Wenbing, Z.; Wei, X.; Beiping, T.; Chunxiao, Z. and Huitao, L., 2007. Effects of Exogenous Enzymes (Phytase, Non-Starch Polysaccharide Enzyme) in Diets on Growth, Feed Utilization, Nitrogen and Phosphorus Excretion of Japanese Seabass, Lateolabrax Japonicus. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology. Vol. 147, No. 2, pp: 502-508.
7
Aimin, W. and Liu, W., 2006. Effects of Exogenous Enzymes on the Growth and Apparent Digestivibility of Allogynogenetic Crucian Carp Fingerlings. Feed Industry. Vol. 2, No: 8, pp: 45-56.
8
Biswas, S.P., 1993. Manual of Methods in Fish Biology. South Asian Publishers.
9
Bjerselius, R.; Hákan, O. and Wenbin, Z., 1995. Endocrine, Gonadal and Behavioral Responses of Male Crucian Carp to the Hormonal Pheromone 17α, 20β Dihydroxy-4-Pregnen-3-One. Chemical Senses. Oxford University Press. Vol. 20, No. 2, pp: 221-230.
10
Bromage, N.; John, J.; Clive, R.; Mark, T.; Briony, D.; John, S.; Jim, D. and Gavin, B., 1992. Broodstock Management, Fecundity, Egg Quality and the Timing of Egg Production in the Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 100, No. 1, pp: 141-166.
11
Brooks, S.; Charles, R.T. and John, P.S., 1997. Egg Quality in Fish: What Makes a Good Egg? Reviews in Fish Biology and Fisheries. Vol. 7, No. 4, pp: 387-416.
12
Castell, J.D. and Klaus, T., 1980. Report of the EIFAC, IUNS and ICES Working Group on Standardization of Methodology in Fish Nutrition research.(Hamburg, Federal Republic of Germany. pp: 21-23.
13
Cosson, J.; Linhart, O.; Mims, S.D.; Shelton, W.L. and Rodina, M., 2000. Analysis of Motility Parameters from Paddlefish and Shovelnose Sturgeon Spermatozoa. Journal of Fish Biology. Vol. 56, No. 6, pp: 1348-1367.
14
Craik, J.C.A. and Harvey, S.M., 1984. Egg Quality in Rainbow Trout: The Relation between Egg Viability, Selected Aspects of Egg Composition, and Time of Stripping. Aquaculture. Vol. 40, No. 2, pp: 115-134.
15
Dalsgaard, J.; Verlhac, V.; Hjermitslev, N.H.; Kim, S.E.; Fischer, M.; Klausen, M. and Per Bovbjerg, P., 2012. Effects of Exogenous Enzymes on Apparent Nutrient Digestibility in Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss) Fed Diets with High Inclusion of Plant-Based Protein. Animal Feed Science and Technology. Vol. 171, No. 2, pp: 181-191.
16
Duray, M.; Hiroshi, K. and Felicitas, P., 1994. The Effect of Lipid-Enriched Broodstock Diets on Spawning and on Egg and Larval Quality of Hatchery-Bred Rabbitfish (Siganus guttatus). The Philippine Scientist 31. San Carlos Publications, University of San Carlos. pp: 42-57.
17
Farhangi, M. and Chris, G.C., 2007. Effect of Enzyme Supplementation to Dehulled Lupin‐based Diets on Growth, Feed Efficiency, Nutrient Digestibility and Carcass Composition of Rainbow Trout, Oncorhynchus mykiss. Aquaculture Research. Vol. 38, No. 12, pp: 1274-1282.
18
Felix, N. and Selvaraj, S., 2004. Enzymes for Sustainable Aquaculture. Aquaculture Asia 9. Network of Aquaculture Centers. pp: 5-6.
19
Forster, I.; Dave, A.H.; Bakhshish, S.; Dosanjh, M.; Rowshandeli, M. and Jim, P., 1999. Potential for Dietary Phytase to Improve the Nutritive Value of Canola Protein Concentrate and Decrease Phosphorus Output in Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss) Held in 11° C Fresh Water. Aquaculture. Vol. 179, No. 1, pp: 109-125.
20
Ghomi, M.R.; Shahriari, R.; Faghani Langroudi, H. and Nikoo, M., 2012. The Effects of Dietary Enzyme on Some Blood Biochemical Parameters of the Cultured Great Sturgeon Huso huso Juveniles. Comparative Clinical Pathology. Vol. 21. No. 2, pp: 201-204.
21
Gonzales, J. and John, M., 2012. Preliminary Evaluation on the Effects of Feeds on the Growth and Early Reproductive Performance of Zebrafish (Danio rerio). Journal of the American Association for Laboratory Animal Science. Vol. 51, No. 4. pp: 401- 412.
22
Hastings, W.H., 1946. Enzyme Supplements to Poultry Feeds. Poultry Science. Vol. 25, No. 6, pp: 584-586.
23
Hidalgo, M.C.; Urea, E. and Sanz, A., 1999. Comparative Study of Digestive Enzymes in Fish with Different Nutritional Habits. Proteolytic and Amylase Activities. Aquaculture. Vol. 170, No. 3, pp: 267-283.
24
Izquierdo, M.S.; Fernandez-Palacios, H. and Tacon, A.G.J., 2001. Effect of broodstock nutrition on reproductive Performance of Fish. Aquaculture. Vol. 197, No. 1, pp: 25-42.
25
Jackson, L.; Scott, M.; Li, H. and Robinson, E.H., 1996. Use of Microbial Phytase in Channel Catfish Ictalurus Punctatus Diets to Improve Utilization of Phytate Phosphorus. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 27, No. 3, pp: 309-313.
26
Jaya-Ram, A.; Meng, K.K.; Phaik, S.L.; Kolkovski, S. and Shu-Chien, A.C., 2008. Influence of Dietary HUFA Levels on Reproductive Performance, Tissue Fatty Acid Profile and Desaturase and Elongase mRNAs Expression in Female Zebrafish. Aquaculture. Vol. 277, No. 3, pp: 275-281.
27
Kazerani, H.R. and Shahsavani, D., 2011. The Effect of Supplementation of Feed with Exogenous Enzymes on the Growth of Common Carp (Cyprinus carpio). Iranian Journal of Veterinary Research. Vol. 12, No. 2, pp: 127-132.
28
Khalafalla, M.M.; Bassiouni, M.I.; Eweedah, N.M. and Elmezyne, H.M., 2010. Performance of Nile Tilapia (Oreochromis niloticus) Fingerlings Fed Diets Containing Defferent Levels of Amecozyme®. Journal of Agricultural Research. Vol. 36, pp: 111-122.
29
Kumar, S.; Sahu, N.P. and Pal, A.K., 2006. Non Gelatinized Corn Supplemented with Microbial Cc-Amylase at Sub-Optimal Protein in the Diet of Labeo Rohita (Hamilton) Fingerlings Increases Cell Size of Muscle. J of Fisheries andAquatic Science. Vol. 1, No. 2, pp: 102-111.
30
Laird, L.M. and Needham Ted. 1988. Growth, Nutrition and Feeding, Salmon and Trout Farming. England: Ellis Horwood Limited.
31
Lin, S.; Kangsen, M. and Beiping, T., 2007. Effects of Exogenous Enzyme Supplementation in Diets on Growth and Feed Uilization in Tilapia, Oreochromis niloticus×O. aureus. Aquaculture Research. Vol. 38, No. 15, pp: 1645-1653.
32
Moran, E.T. and McGinnis. J., 1968. Growth of Chicks and Turkey Poults Fed Western Barley and Corn Grain-Based Rations: Effect of Autoclaving on Supplemental Enzyme Requirement and Asymmetry of Antibiotic Response between Grains. Poultry Science. Vol. 47, No 1, pp: 152-158.
33
Ng, W; Chen, K. and Mei, L., 2002. Replacement of Soybean Meal with Palm Kernel Meal in Practical Diets for Hybrid Asian-African Catfish, Clarias macrocephalus× C. gariepinus. J of applied aquaculture. Vol. 12, No. 4, pp: 67-76.
34
NIE, G.X.; Jun, l.W. and Zhou, H., 2011. Effects of Xylanase on Growth and Levels of Serum Hormones of Tilapianilotica. J of fishery sciences of China. Vol. 2, pp: 1-10.
35
Pettersson, D. and Åman, P., 1989. Enzyme Supplementation of a Poultry Diet Containing Rye and Wheat. British J of Nutrition. Vol. 62, No. 1, pp: 139-149.
36
Reidel, A.; Wilson, R.B.; Aldi, F. and Romagosa, E., 2010. The Effect of Diets with Different Levels of Protein and Energy on the Process of Final Maturation of the Gametes of Rhamdia quelen Stocked in Cages. Aquaculture. Vol. 298, No. 3-4, pp: 354-359.
37
Ritz, C.W.; Hulet, R.M.; Self, B.B. and Denbow, D.M., 1995. Growth and Intestinal morphology of male Turkeys as influenced by dietary supplementation of Amylase & Xylanase. Poultry Science. Vol. 74, No. 8, pp: 1329-1334.
38
Rurangwa, E.; Kime, D.E.; Ollevier, F. and Nash, J.P., 2004. The Measurement of Sperm Motility and Factors Affecting Sperm Quality in Cultured Fish. Aquaculture. Vol. 234, No. 1, pp: 1-28.
39
Sardar, P.; Randhawa, H.S.; Abid, M. and Prabhakar, S.K.,2007. Effect of dietary microbial Phytase supplementation on Growth Performance, Nutrient Utilization, Body Compositions and Haemato‐biochemical Profiles of Cyprinus carpio. Fingerlings Fed Soyprotein based Diet. Aquaculture Nutrition. Vol. 13, No. 6, pp: 444-456.
40
Soltan, M.A., 2009. Effect of Dietary Fish Meal Replacement by Poultry By-Product Meal with Different Grain Source and Enzyme Supplementation on Performance, Feces Recovery, Body Composition and Nutrient Balance of Nile Tilapia. Pakistan J of Nutrition. Vol. 8, No. 4, pp: 395-407.
41
Tahoun, A.M.; Mabroke, R.S.; El-Haroun, E.R. and Suloma, A., 2011. Effect of Exogenous Enzyme Supplementation on Reproductive Performance of Broodstock Nile Tilapia Reared in a Hapa-in-Pond Hatchery System. In Proceedings of the 4th Global Fisheries and Aquaculture Research Conference, the Egyptian International Center for Agriculture, Giza, Egypt. pp: 61-73.
42
Thongprajukaew, K.; Kovitvadhi, U.; Kovitvadhi, S.; Somsueb, P. and Rungruangsak Torrissen, K., 2011. Effects of Different Modified Diets on Growth, Digestive Enzyme Activities and Muscle Compositions in Juvenile Siamese Fighting Fish. Aquaculture. Vol. 322, pp: 1-9.
43
Turner, E. and Montgomerie, R., 2002. Ovarian Fluid Enhances Sperm Movement in Arctic Charr. Journal of Fish Biology. Vol. 60, No. 6, pp: 1570-1579.
44
Vielma, J.; Ruohonen, K. and Gabaudan, J., 2004. Top spraying Soybean Meal‐based Diets with Phytase Improves Protein and Mineral Digestibilities but Not Lysine Utilization in Rainbow Trout, Oncorhynchus mykiss. Aquaculture Research. Vol. 35, No. 10, pp: 955-964.
45
Weerd, J.H.van., 1999. Balance Trials with African Catfish Clarias gariepinus Fed Phytase treated Soybean Meal‐based Diets. Aquaculture Nutrition. Vol. 5, No. 2, pp: 135-42.
46
Wen-ju, W.; Ji-ting1, W.A.N. and Shu-qin, W., 2008. Effects of Non-Starch Polysaccharide on Activities of Protease and Amylase of Hybrid Tilapia (Oreochromis niloticus×O. aureus). Chinese J of Animal Nutrition. Vol. 5, pp: 9-16.
47
Yildirim, Y.B., 2010. Effects of Exogenous Enzyme Supplementation in Diets on Growth and Feed Utilization in African Catfish, Clarias gariepinus. Journal of Animal and Veterinary Advances. Vol. 9, No. 2, pp: 327-331.
48
Zamini, A.; Kanani, H.; Esmaeili, A.; Ramezani, S. and Zorie Zahara, J., 2012. Effects of Two Dietary Exogenous Multi-Enzyme Supplementation, Natuzyme® and Beta Mannanase, on Growth and Blood Parameters of Caspian Salmon. Comparative Clinical Pathology. pp: 1-6.
49
ORIGINAL_ARTICLE
اثر افزایش تراکم نگه داری بر عملکرد رشد، غلظت هورمون کورتیزول و بیان ژن پروتئین شوک حرارتی در ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
تراکم نگه داری به عنوان یک عامل استرس زای مزمن در آبزیپروری تلقی می شود. هدف از این مطالعه، مقایسه عملکرد رشد، تغییرات هورمون کورتیزول و بیان امآرانای ژن پروتئین شوک حرارتی (70 HSP) ماهی قزل آلای رنگین کمان (Onchorhynchus mykiss) در دو تراکم نگه داری متداول کشور در سیستم پرورشی باز می باشد. به این منظور، قزل آلای جوان تمام ماده با دو تراکم نگه داری 24 (تراکم متوسط) و 44 (تراکم بالا) کیلوگرم بر مترمکعب و تراکم بارگذاری 1 لیتر بر دقیقه به ازای هرکیلوگرم ماهی به مدت 60 روز مورد مطالعه قرار گرفت. نتایج حاصله کاهش معنی دار میانگین وزن نهایی ماهیان را در تراکم بالا و به میزان 6/2% در مقایسه با تیمار تراکم متوسط نشان داد. با این وجود، افزایش تراکم نگه داری اثری بر طول کل، چنگالی و استاندارد در پایان آزمایش نداشت. هم چنین، افزایش تراکم نگه داری هیچ گونه تغییر معنی داری را در طول نسبی باله های سینه ای، شکمی، مخرجی، پشتی و دمی پس از دو ماه موجب نشد. از سوی دیگر، درصد افزایش وزن، افزایش وزن روزانه، نرخ رشد ویژه و ضریب رشد حرارتی در تیمار تراکم بالا، کاهش معنی داری را در مقایسه با تیمار تراکم متوسط نشان داد. در مقابل، تغییرات ضریب چاقی فاقد اختلاف معنی دار بود. افزایش تراکم نگه داری موجب افزایش ضریب تغییرات وزن ماهیان و ضریب تبدیل غذایی گردید. مقادیر گلوکز و هورمون کورتیزول خون فاقد تغییر معنی دار بین دو تیمار آزمایشی بود. در پایان، مقادیر بیان ژن 70 HSP ماهیچه در سطح ام آر ان ای افزایش معنی داری را در تیمار تراکم بالا در مقایسه با تراکم متوسط نشان داد. نتایج این مطالعه نشان می دهد که افزایش تراکم نگهداری در محدوده تراکم های مجاز در سیستم های فاقد اکسیژن دهی، می تواند موجب ایجاد استرس در ماهیان شده که به صورت تغییر برخی از پارامترهای رشدی مورد بررسی در این مطالعه و نیز افزایش میزان بیان ام آر ان ای 70 HSP مشاهده گردید. لذا افزایش تراکم نگهداری، بایستی توام با به کارگیری تمهیدات مدیریتی صحیح و رهیافت تغذیه ای در جهت تقلیل استرس مربوطه و تقویت سیستم ایمنی ماهی باشد.
http://www.aejournal.ir/article_92160_749e73b24c30fb127432b61f58e160b6.pdf
2019-07-23
225
232
قزل آلای رنگین کمان
تراکم نگه داری
کورتیزول
70 HSP
سعید
زاهدی
szahedit@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
آرش
اکبرزاده
akbarzadeh@alumni.ut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
جلیل
مهرزاد
mehrzad@um.ac.ir
3
گروه میکروبیولوژی و ایمونولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، ایران
AUTHOR
احمد
نوری
noori@hormozgan.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
محمد
هرسیج
m_harsij80@yahoo.com
5
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
Aksakal, E.; Ekinci, D.; Erdogan, O.; Beydemir, S.; Alim, Z. and Ceyhun, S.B., 2011. Increasing stocking density causes inhibition of metabolic–antioxidant enzymes and elevates mRNA levels of heat shock protein 70 in rainbow trout. Livestock. Sci. Vol. 141, pp: 69-75.
1
Bagley, M.J.; Bentley, B. and Gall, G.A., 1994. A genetic evaluation of the influence of stocking density on the early growth of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture, Vol. 121, No. 4, pp: 313-326.
2
Basu, N.; Todgham, A.E.; Ackerman, P.A.; Bibeau, M.R.; Nakano, K.; Schulte, P.M. and Iwama, G.K., 2002. Heat shock protein genes and their functional significance in fish. Gene. Vol. 295, No. 2, pp: 173-183.
3
Boujard, T.; Labbe, L. and Auperin, B., 2002. Feeding behavior, energy expenditure and growth of rainbow trout in relation to stocking density and food accessibility. Aquaculture Res. Vol. 33, No. 15, pp: 1233-1242.
4
Conte, F.S., 2004. Stress and the welfare of cultured fish. Appl. Anim. Behav. Sci. Vol. 86, pp: 205-223.
5
Ellis, T., North, B.; Scott, A.P.; Bromage, N.R.; Porter, M. and Gadd, D., 2002. The relationships between stocking density and welfare in farmed rainbow trout. J. Fish. Biol. Vol. 61, No. 3, pp: 493-531.
6
Gornati, R.; Papis, E.; Rimoldi, S.; Terova, G.; Saroglia, M. and Bernardini, G., 2004. Rearing density influences the expression of stress-related genes in sea bass (Dicentrarchus labrax, L.). Gene. Vol. 34, pp: 111- 118.
7
Holm, J.C.; Refstie, T. and Bø, S., 1990. The effect of fish density and feeding regimes on individual growth rate and mortality in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 89, No. 3-4, pp: 225-232.
8
Kebus, M.J.; Collins, M.T.; Brownfield, M.S.; Amundson, C.H.; Kayes, T.B. and Malison, J.A., 1992. Effects of rearing density on the stress response and growth of rainbow trout. J. Aquat. Anim. Health. Vol. 4, No. 1, pp: 1-6.
9
Küçükbay F.Z.; Yazlak, H.; Karaca, I.; Sahin, N.; Tuzcu, M.; Cakmak, M.N. and Sahin, K., 2009. The effects of dietary organic or inorganic selenium in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) under crowding conditions. Aquaculture Nutr. Vol. 15, No. 6, pp: 569-576.
10
Laursen, D.C.; Silva, P.I.; Larsen, B.K. and Höglund, E., 2013. High oxygen consumption rates and scale loss indicate elevated aggressive behaviour at low rearing density, while elevated brain serotonergic activity suggests chronic stress at high rearing densities in farmed rainbow trout. Physiol. Behav. Vol. 122, pp: 147-154.
11
Liu, B.; Liu, Y. and Sun, G., 2017. Effects of stocking density on growth performance and welfare‐related physiological parameters of Atlantic salmon Salmo salar L. in recirculating aquaculture system. Aquaculture Res. Vol. 48, No. 5, pp: 2133-2144.
12
Livak, K.J. and Schmittgen, T.D., 2001. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2−ΔΔCT method. Methods. Vol. 25, No. 4, pp: 402-408.
13
Montserrat, N.; Gabillard, J.C.; Capilla, E.; Navarro, M.I. and Gutiérrez, J., 2007. Role of insulin, insulin-like growth factors, and muscle regulatory factors in the compensatory growth of the trout (Oncorhynchus mykiss). Gen. Comp. Endocrinol. Vol. 150, No. 3, pp: 462-472.
14
Naderi, M.; Keyvanshokooh, S.; Salati, A.P. and Ghaedi, A., 2017a. Effects of chronic high stocking density on liver proteome of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish. Physiol. Biochem. pp: 1-13.
15
Naderi, M.; Keyvanshokooh, S.; Salati, A.P. and Ghaedi, A., 2017b. Effects of dietary vitamin E and selenium nanoparticles supplementation on acute stress responses in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) previously subjected to chronic stress. Aquaculture. Vol. 473, pp: 215-222.
16
North, B.P.; Turnbull, J.F.; Ellis, T.; Porter, M.J.; Migaud, H., Bron, J. and Bromage, N.R., 2006. The impact of stocking density on the welfare of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 255, No. 1, pp: 466-479.
17
Papoutsoglou, S.E.; Tziha, G.; Vrettos, X. and Athanasiou, A., 1998. Effects of stocking density on behaviour and growth rate of European sea bass (Dicentrarchus labrax) juveniles reared in a closed circulated system. Aquac. Eng. Vol. 18, pp: 135- 144.
18
Person-Le Ruyet, J.; Labbé, L.; Le Bayon, N.; Severe, A.; Roux, A.; Delliou, H. and Quéméne, L., 2008. Combined effects of water quality and stocking density on welfare and growth of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquat. Living. Resour. Vol. 21, pp: 185-195.
19
Pickering, A.D. and Pottinger, T.G., 1987. Poor water quality suppresses the cortisol response of salmonid fish to handling and confinement. J. Fish. Biol. Vol. 30, pp: 41-50.
20
Rotllant, J.; Balm, P.H. M.; Ruane, N.M.; Perez-Sanchez, J. and Wendelaar-Bonga, S.E., 2000. Pituitary Proopiomelanocortin-Derived Peptides and Hypothalamus Pituitary–Interrenal Axis Activity in Gilthead Sea Bream (Sparus aurata) during Prolonged Crowding Stress: Differential Regulation of Adrenocorticotropin Hormone and α-Melanocyte-Stimulating Hormone Release by Corticotropin Releasing Hormone and Thyrotropin Releasing Hormone. Gen. Comp. Endocrinol. Vol. 119, pp: 152-163.
21
Suárez, M.D.; Trenzado, C.E.; García-Gallego, M.; Furné, M.; García-Mesa, S.; Domezain, A.; Alba, I. and Sanz, A., 2015. Interaction of dietary energy levels and culture density on growth performance and metabolic and oxidative status of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquac. Eng. Vol. 67, pp: 59-66.
22
Tort, L.; Sunyer, J.O.; Gomez, E. and Molinero, A., 1996. Crowding stress induces changes in serum haemolytic and agglutinating activity in the gilthead sea bream Sparus aurata. Vet. Immunol. Immunopathol. Vol. 51, pp: 179-188.
23
Trenzado, C.E.; de la Higuera, M. and Morales, A.E., 2007. Influence of dietary vitamins E and C and HUFA on rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) performance under crowding conditions. Aquaculture. Vol. 263, No. 1, pp: 249-258.
24
Valenzuela, C.A.; Zuloaga, R.; Mercado, L.; Einarsdottir, I.E.; Bjornsson, B.T.; Valdes, J.A. and Molina, A., 2017. Chronic stress inhibits growth and induces proteolytic mechanisms through two different non-overlapping pathways in the skeletal muscle of a teleost fish. Am. J. Physiol. Regul. Integr. Comp. Physiol: Integr. Comp. Physiol. pp: ajpregu 00009.
25
Vijayan, M.M. and Leatherland, J.F., 1988. Effect of stocking density on the growth and stress response in brook charr, Salvelinus fontinalis. Aquaculture. Vol. 75, pp: 159- 170.
26
Wendelaar Bonga, S.E., 1997. The stress response in fish. Physiol. Rev. Vol. 77, pp: 591-625.
27
Yarahmadi, P.; Miandare, H.K.; Fayaz, S. and Caipang, C.M.A., 2016. Increased stocking density causes changes in expression of selected stress-and immune-related genes, humoral innate immune parameters and stress responses of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 48, pp: 43-53.
28
Zahedi, S.; Mirvaghefi, A.; Rafati, M. and Mehrpoosh, M., 2013. Cadmium accumulation and biochemical parameters in juvenile Persian sturgeon, Acipenser persicus, upon sublethal cadmium exposure. Comp. Clin. Pathol. Vol. 22, No. 5, pp: 805-813.
29
Zahedi, S.; Mirvaghefi, A.; Rafati, M.; Rafiee, G.; Mojazi Amiri, B.; Hedayati, M.; Makhdoomi, C. and Zarei Dangesaraki, M., 2014. The effect of sub-lethal exposure to copper and the time course of recovery in clean water on biochemical changes in juvenile fish (Acipenser persicus). Mar. Freshwat. Behav. Physiol. Vol. 47, No. 4, pp: 253-264.
30
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر سمیت تحت کشنده علف کش (MCPA+ 2,4-D) بر برخی شاخص های خونی و آنزیم های کبدی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
این تحقیق به منظور بررسی اثر سمیت تحت حاد علف کش توفوردی- ام پی سی آ طی مدت زمان 2 و 3 هفته، بر برخی شاخص های خونی و آنزیم های کبدی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchusmykiss) انجام شد. پس از تعیین LC50 سم با استفاده از مدل پروبیت، القای غلظت تحت کشنده (یک نهم LC50) علف کش ترکیبی توفوردی–ام سی پی آ به میزان 0/11 میلی لیتر بر لیتر (معادل 40 میلی گرم بر لیتر توفوردی + 35 میلی گرم بر لیتر ام سی پی آ) صورت پذیرفت. نمونه های خون از قزل آلای رنگین کمان با میانگین وزنی 97 گرم که به مدت دو هفته و سه هفته در معرض غلظت تحت کشنده علف کش توفوردی-ام سی پی آ قرار داشتند و ماهیانی که در معرض علف کش نبودند، گرفته شد. نتایج نشان داد که علف کش توفوردی- ام پی سی آ موجب تغییرات در پارامترهای خونی و آنزیم های کبدی ماهی قزل آلای رنگین کمان بعد از دوهفته و سه هفته می گردد که این تغییرات در شاخص های خونی با کاهش گلبول های قرمز، گلیول های سفید، نوتروفیل و لنفوسیت در تیمارهایی که ماهیان در معرض غلظت تحت کشنده علف کش قرار داشت، همراه بود(0/05>P) کم ترین میزان گلبول های قرمز خون و بیش ترین مونوسیت ها، آنزیم های کبدی آلانین آمینو ترانسفراز و آسپارتات آمینو ترانسفراز در تیماری که ماهیان در معرض غلظت تحت کشنده علف کش به مدت سه هفته بودند مشاهده شد (0/05>P). نتایج حاصل از این تحقیق نشان داد که سمیت تحت کشنده علف کش توفوردی-ام سی پی آ به مدت دوهفته و سه هفته، با کاهش گلبول های سفید، نوتروفیل و لنفوسیت ها می تواند منجر به تضعیف فعالیت سیستم ایمنی ماهی قزل آلای رنگین کمان گردد و افزایش سطح آنزیم های کبدی در سرم خون نیز آسیب های ناشی از مواجهه با این سم را نشان می دهد.
http://www.aejournal.ir/article_92359_f35c122ee24b7f271e006e47d9e1abcc.pdf
2019-07-23
233
240
توفوردی- ام سی پی آ
شاخص های خونی
علف کش
سیستم ایمنی
آنزیم های کبدی
قزل آلای رنگین کمان
پریا
اکبری
paria.akbary@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
AUTHOR
فرزاد
غیاثی
f.ghiasi@uok.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه کردستان، سنندج، ایران
LEAD_AUTHOR
محسن
علی
mani_a777 @yahoo.com
3
گروه بهداشت و بیماری آبزیان، دانشکده دامپزشکی شیراز، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
حاجی شریفی، غ.م. و شکوه فر، ع.، 1388. جایگزینی علف کش های نیشکری به منظور کاهش مصرف سموم شیمیایی و استفاده بهینه از نهادهای کشاورزی در مزارع نبشکر استان خوزستان. فصلنامه علمی تخصصی فیزیولوژی گیاهان زراعی. دوره 1، شماره 1، صفحات 49 تا 57.
1
شریف پور، ع.؛ سلطانی، م. و جوادی، م.، 1382. تعیین 50LC و ضایعات بافتی ناشی از سم آندوسولفان در بچه فیل ماهی (Huso huso). مجله علمی شیلات ایران. دوره 12، شماره 4، صفحات 69 تا 84.
2
شموشکی، م.م.ن.؛ سلطانی، م.؛ شریف پور، ع. و ایمانپور، م.، 1391. بررسی اثر غلظت های تحت کشنده سم دیازینون بر فعالیت برخی آنزیم های سرمی مولدین نر ماهی سفید. مجله دامپزشکی ایران. دوره 8، شماره 4، صفحات 94 تا 101.
3
علی، م.؛ غیاثی، ف. و بدخشان، ه.، 1393. بررسی اثر مقدار حاد علف کش ترکیبی (-dichlorophenoxyacetic acid 4و2 ) و (chlorophenoxyacetic acid -4- Methyl-2) بر فاکتورهای خونی و آنزیم-های کبدی ALTو AST قزل آلای رنگین کمان Rainbow (Oncorhynchus mykiss) trout. مجله سلامت و محیط. دوره 7 ، شماره 1، صفحات 95 تا 104.
4
مدرسی، م. و سیف، م.ر.، 1390 . بررسی تاثیر سم ارگانوکلره آندوسولفان بر پارامترهای خونی در موش صحرایی. مجله دانشگاه علوم پزشکی شهرکرد. دوره 13، شماره 2، صفحات 26 تا 31.
5
نفیسی بهابادی، م.؛ دادگر، ش.؛ لکزایی، ف.؛ مهاجری برازجانی، ژ. و عبدالهی، ر. 1395. تأثیر غلظت های تحت حاد علف کش بوتاکلر بر برخی پارامترهای خونی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران. دوره 25، شماره 2، صفحات 151 تا 162.
6
Alexander, H.; Gersich, F. and Mayes, M., 1985. Acute toxicity of four phenoxy herbicides to aquatic organisms. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 35, No. 1, pp: 314-321.
7
Ashton, F.M. and Craft, A.S., 1981. The mechanism of action of herbicides, Mode of action of herbicides. 2nd ed. John Wiley & Sons, New York. 525 P.
8
Aylward, L.L.; Morgan, M.K.; Arbuckle, T.E.; Barr, D.B.; Burns, C.J. and Alexander, B.H., 2010. Biomonitoring data for 2,4-dichlorophenoxyacetic acid in the United States and Canada: interpretation in a public health risk assessment context using Biomonitoring Equivalents. Environmental Health Perspectives. Vol. 118, No. 2, pp: 177-1781.
9
Bahmani, M.; Kazemi, R. and Donskaya,P., 2001. A comparative study of some hematological features in young reared sturgeons (Acipenser persicus and Huso huso). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 24, pp: 135-140.
10
Banaee, M.; Mirvagefei, A.R.; Rafei, G.R. and Majazi Amiri, B. 2008. Effect of sub-lethal diazinon concentration on blood plasma biochemistry. International Journal of Environmental Research. Vol. 2, No. 2, pp:189-198.
11
Bukowska, B., 2006. Toxicity of 2,4-dichlorophenoxyacetic acid molecular mechanisms. Polish Journal of Environmental Studie. Vol. 115, No. 3, pp: 365-374.
12
Çaglan, A.; Benli, K.;Sarıkaya, R.;Sepici-Dincel, A.;Selvi, M.; Şahin, D. and Erkoç, F., 2007. Investigation of acute toxicity of (2,4-dichlorophenoxy) acetic acid (2,4-D) herbicide on crayfish (Astacus leptodactylus Esch. 1823) Pesticide Biochemistry and Physiology. Vol. 88, No. 3, pp: 296-299.
13
Carpenter, L.A. and Eaton, D.L., 1983. The Disposition of 2,4-Dichlorophenoxyacetic Acid in Rainbow Trout. Archives of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 12, No. 2, pp: 169-173.
14
Edsall, C.C., 1999. A blood chemistry profile for lake trout. Journal of Aquatic Animal Health. Vol. 11, No. 1, pp: 81-86.
15
Farre, M.; Gajda-Schrantz, K.; Kantiani, L. and Barceló, D., 2009. Ecotoxicity and analysis of nanomaterials in the aquatic environment. Analytical and Bioanalytical Chemistry. Vol. 393, No. 1, pp: 81-95.
16
Federal Insecticide (USA). 2003. Fungicide and rodenticide act. Environ Protect. Vol. 23, pp: 59-61.
17
Finney, D.J. and Stevens, W.L., 1948. A table for the calculation of working probits and weights in probit analysis. Biometrika. Vol. 35, No. 1-2, pp: 191-201.
18
Gomez, L.; Masot, J.; Martinez, S.; Duran, E.; Soler, F. and Roncero, V., 1998. Acute 2,4-D poisoning in tench (Tinca tinca L.) lesions in the hematopoietic porton of kidney. Arch. Environ. Comtam. Toxicol. Vol. 35, pp: 479-483.
19
Grabinska-Sota, E.; Wiśniowska, E. and Kalka, J., 2003. Toxicity of selected synthetic auxins-2, 4-D and MCPA derivatives to broad-leaved and cereal plants. Crop Protection. Vol. 22, No. 2, pp: 355-360.
20
Hymavathi, V. and Rao, L.M., 2000. Effect of sublethal concentration of lead on the Haematology and Biochemical Constituents of Channa punctatus. Bulletin of Pure and Applied Sciences. Vol. 19, pp: 1-5.
21
khattak, I.U.D. and Hafeez, M.A., 1996. Effect of malathionon blood parameters of fish Cyprinion watsoni pak. Journal of Zoology. Vol. 28, pp: 45-49.
22
Kumar, P.; Kumar Gupta, Y. and Pandey D., 2016. Effect of pesticides 2, 4-on hematological parameters of channa punctatus. International Journal of Biological Research. Vol. 4, No. 2, pp: 245-248.
23
Neskovid, N.K.; Karan, V.; Elezovic, I.; Poleksić, V. andBudimir, M., 1994. Toxic effects of 2, 4-D herbicide on fish. Journal of Environmental Science & Health Part B. Vol. 29, No. 2, pp: 265-279.
24
Ololade, I.A. and Oginni, O., 2010. Toxic stress and hematological effects of nickel on African catfish, Clarias gariepinus, Fingerlings. Journal of Environmental Chemistry and Ecotoxicology. Vol. 2, No. 2, pp: 14-19.
25
Parma, M.J.; Loteste, A.; Campana, M. and Bacchetta, C., 2007. Changes of hematological parameters in Prochiloduslineatus (Pisces, Prochilodontidae) exposed to sublethal concentration of cypermethrin. Journal of Environmental Biology. Vol. 28, No. 1, pp: 147-149.
26
Salvo, L.M.; Malucelli, M.I.C.; Dasiliva, J.R.C.; Alberton, G.C. and Silva DeAssis, H.C., 2015. Toxicity assessment of 2,4-D and MCPA herbiurnal of Envicides in primary culture of fish hepatic cells. Journal of Environmental Science and Health, Part B. Vol. 50, pp: 449-455.
27
Sarikaya, R. and Yılmaz, M., 2003. Investigation of acute toxicity and the effect of 2, 4-D (2, 4-dichlorophenoxyacetic acid) herbicide on the behavior of the common carp (Cyprinus carpio) L., 1758; Pisces, Cyprinidae. Chemosphere. Vol. 52, No. 1, pp: 195-201.
28
Schaperclaus, W.; Kulow, H. and Schreckenbach, K., 1991. Hematological and serological technique. In: Fish Disease. Kothekar, V.S. (ed.) (2 nd ed.). Connaught circus, Gulab primlani, Oxonian press. New Delhi, India. pp: 71-108.
29
Shah, S.L. and Altindag, A., 2004. Hematological parameters of tench (Tinca tinca L.) after acute and chronic exposure to lethal and sublethal mercury treatments. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 73, No. 5, pp: 911-918.
30
Siwicki, A.K.; Cossarini-Dunier, M.; Studnicka, M. andDemael, A., 1990. In vivo effect of the organophosphorus insecticide trichlorphon on immune response of carp (Cyprinus carpio). II. Effect of high doses of trichlorphon on nonspecific immune response. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 19, No. 1, pp: 99-105.
31
Svobodova, Z.; Kroupova, H.; Modra, M.; Flajshans, T.;Randak, T. and Savina, LV., 2008. Haematological profile of common carp spawners of various breeds. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 24, No. 1, pp: 55-59.
32
Venkateswara Rao, J., 2006. Toxic effects of novel organophosphorus insecticide (RPR-V) on certain biochemical parameters of euryhaline fish, Oreochromis mossambicus. Pesticide Biochemistry and Physiology. Vol, 86, pp: 78-84.
33
Verschuuren, H.G.; Kroes, R. and Den Tonkelaar, E.M., 1975. Short-term oral and dermal toxicity of MCPA and MCPP. Toxicology. Vol, 3, No. 3, pp: 349-59.
34
Ware, G.W., 2000. An introduction to herbicides (No. D-1601). Agricultural Research and Advisory Bureau.
35
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین غلظت آرسنیک در ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) و ارزیابی خطر مصرف آن در استان کردستان
فلزآرسنیک به عنوان یکی از فلزات سنگین آلاینده اکوسیستم های آبی موجب ایجاد مسمومیت و نگرانی در مصرف ماهی شده است. پژوهش حاضر با هدف بررسی غلظت فلز آرسنیک در بافت کبد و عضله، هم چنین ارتباط آن با وزن و طول چنگالی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) و ارزیابی خطر مصرف آن انجام شد. 60 قطعه ماهی قزل آلای رنگین کمان در دو حوضچه پرورش ماهی واقع در شهرستان های سنندج (روستای ننله) و کامیاران (روستای دیوزناو) تهیه گردید (تعداد 30 قطعه از هر حوضچه) و پس از هضم اسیدی نمونه های مذکور، غلظت فلز آرسنیک به وسیله دستگاه جذب اتمی مدل Phonix 986 اندازه گیری شد. میانگین غلظت فلز آرسنیک دربافت هایکبدو عضله به ترتیب 28/16 و 15/68 میکروگرم برگرم وزن خشک به دست آمد. تجمع آرسنیک در بافت کبد بیش از بافت عضله مشاهده شد (0/05>P). ارتباط نسبتاً قوی بین غلظت این فلز با طول چنگالی و وزن کل داشت (0/01>p). هم چنین نتایج نشان داد بین حوضچه های شهرستان کامیاران و سنندج از لحاظ غلظت آرسنیک در بافت های مورد مطالعه، تفاوت معنی داری وجود نداشت. با توجه به نتایج محاسبه شاخص خطر برای مصرف روزانه 25 گرم ماهی خطرمصرف وجود دارد و مقدار حداکثر مصرف روزانه مجاز 1/3 گرم برای یک فرد بالغ 70 کیلوگرمی محاسبه گردید. با مقایسه غلظت های اندازه گیری شده این تحقیق با حد مجاز استانداردهای بینالمللی در بافت عضله مشخص شد، غلظت آرسنیک بیش از استانداردهای USEPA، FAO و WHO می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_92567_9d29bba776653d9355d00ff343a8a634.pdf
2019-07-23
241
246
آرسنیک
قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
کبد
عضله
هادی
تحسینی
haditahsini@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه کردستان، سنندج، ایران
LEAD_AUTHOR
محسن
احمدپور
m_ahmadpour_en@yahoo.com
2
مرکز پژوهشی حوضه اقلیمی خزر، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران
AUTHOR
چاکری، ر.؛ سجادی، م.م.؛ کامرانی، ا. و آقاجاری، ن.، 1394. تعیین میزان غلظت فلزات سنگین سرب و کادمیوم در عضله و کبد ماهی طلالی (Rastrelliger kanagurta) در آب خلیج فارس. مجله علمی شیلات ایران. سال 24، شماره 2، صفحات 115 تا 125.
1
خبرگزاری ایرنا. 1393. تعطیلی مجتمع پرورش ماهی پالنگان زنگ خطری برای گردشگری منطقه سنندج. کد خبر: 81228044.
2
سالنامه آماری سازمان شیلات ایران 1390-1380. 1391. سازمان شیلات ایران معاونت برنامه ریزی و توسعه مدیریت، دفتر برنامه و بودجه. 60 صفحه.
3
سالنامهآماری سازمانشیلاتایران. 1393. سالنامه آماری سازمان شیلات ایران معاونت برنامه ریزی و توسعه مدیریت، دفتر برنامه و بودجه. تهران. چاپ اول. 64 صفحه.
4
عادلی، ا.، 1393. تحلیل بازار عرضه قزل آلای رنگین کمان در ایران و جهان. مجله شیلات دانشگاه آزاد اسلامی واحد آزادشهر. سال 8، شماره 1، صفحات 118 تا 111.
5
عسگری ساری، ا. و محمدی، م.، 1394. بررسی و مقایسه فلز آرسنیک در عضله و کبد ماهیان پرورشی کپورنقره ای، کپور معمولی، کپور علفخوار، کپور سرگنده و قزل آلای رنگین کمان در اهواز و شهرکرد. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. سال 6، شماره 23، صفحات 69 تا 76.
6
مشروفه، ع.ر.؛ ریاحی بختیاری، ع.ر. و پورکاظمی، م.، 1391. بررسی میزان فلزات کادمیوم، نیکل، وانادیوم و روی در بافت های مختلف فیل ماهی ازون برون و ریسک ناشی از مصرف بافت عضلانی آن ها مربوط به حوزه جنوبی دریای خزر. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. دوره 96، صفحات 90 تا 97.
7
ندافی، ک.؛ نبی زاده، ر.؛ یونسیان، م.؛ جاهد، غ.ر. و بیکی، ا.، 1385. استفاده از ماهی قزل آلا برای سنجش سمیت ناشی از آرسنیک در آب. مجله آب و فاضلاب. شماره 58، صفحات 61 تا 69.
8
ولایت زاده، م.؛ عسکری ساری، ا.؛ بهشتی، م.؛ محجوب، ث. و حسینی، م.، 1392. اندازه گیری فلزات سنگین (کادمیوم، جیوه، روی، نیکل، قلع و آهن) در کنسرو تون ماهیان. مجله پژوهش های جانوری. جلد 26، شماره 4. صفحات 498 تا 506.
9
میرسنجری، م.؛ غلامی، ز. و نگهبان، م.، ۱۳۸۰. بررسی اثرات آلودگی فلزات سنگین (جیوه وسرب) بر روی آبزیان دریای مازندارن، چهارمین همایش ملی بهداشت محیط، یزد، دانشگاه علوم پزشکی یزد.
10
Al Bakheet, S.A.; Attafi, I.M.; Maayah, Z.H.; Abd-Allah, A.R.; Asiri, Y.A. and Korashy, H.M., 2013. Korashy, 544 Effect of long-term human exposure to environmental heavy metals on the expression of 545 detoxification and DNA repair genes, Environment Pollution. Vol. 181, pp: 226-232.
11
Bosch, A.C.; O'Neill, B.; Sigge, G.O.; Kerwath, S.E. and Hoffman, L.C., 2016. Heavy metals in marine fish meat and consumer health. J. Sci. Food Agric. Vol. 96, pp: 32-34.
12
Bla´zovics, A.; Abaza, M.; Sı´pos, P.; Szemtmiha´lyi, K.; Fehe´r, E. and Szila´gyi, M., 2002. Biochemical and morphological changes in liverand gallbladder bile of broiler chicken exposed to heavy metals (cadmium, lead, mercury). Trace Elements and Electrolytes. Vol. 19, No. 1, pp: 42-47.
13
De Rosemond, S.; Xie, Q. and Liber, K., 2008. Arsenic concentration and speciation in five freshwater fish species from Back Bay near Yellowknife, NT, Canada. Environmental Monitoring & Assessment. Vol. 147, pp: 199-210.
14
Food and Agriculture Organization. 2000. Compilation of legal limits for hazardous substances in fish and fishery products. FAO Fishery Circular. No. 464, pp: 5-10.
15
El-Moselhy, Kh.M.; Othman, A.I.; Abd El-Azem, H. and El-Metwally, M.E.A., 2014. Bioaccumulation of heavy metals in some tissues of fish in the Red Sea, Egypt Egyptian journal of Basic and Applied sciences. Vol. 30, pp: 1-9.
16
Fallah, A.A.; Siavash, S.; Dehkordi, S.; Nematollahi, A. and Jafari, T., 2011. Comparative study of heavy metal and trace element accumulation in edible tissues of farmed and wild rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) using ICP-OES technique. Micro chemical Journal. Vol. 98, pp: 275-279.
17
Freedman, B., 1989. Environmental Ecology. The impact of pollution and other stresses on ecosystem structure and function. Academic press, London.
18
Hajeb, P.; Jinap, S.; Ismail, A.; Fatimah, A.B.; Jamilah, B. and Abdul Rahim, M., 2009. Assessment of mercury level in commonly consumed marine fishes in Malaysia. Food Control. Vol. 20, pp: 79-84.
19
Haschek, W.M. and Rousseaux, C.G., 1998. Fundamentals of Toxicological Pathology. Academic Press, San Diego, California, USA.
20
Harkabusova, V.; Macharackova, B.O.; Celechovska, O. and Vitoulova, E., 2009. Determination of Arsenic in the Rainbow Trout Muscle and Rice Samples. Czech Journal Food Sciences. Vol. 27, pp: 404-406.
21
Mendil, D. and Uluozlu, O.D., 2007. Determination of trace metal levels in sediment and five fish species from lakes in Tokat, Turkey. Food Chemistry. Vol. 101, No. 2, pp: 739-745.
22
Mol, S.; Karakulak, F.S. and Ulusoy, S., 2017. Potential health risks due to heavy metal uptake via consumption of Thunnus thynnus from the northern Levantine Sea. Toxin Reviews. pp: 1-6.
23
Leung P.T.Y.; Ip, J.C.H.; Mak, S.S.T.; Qiu, J.W.; Lam, P.K.S. and Wong, C.K.C., 2014. De novo transcriptome analysis of Perna viridis highlights tissue-specific patterns for environmental studies. BMC Genomics. Vol. 15, pp: 804-810.
24
Rao, L.M. and Padmaja, G., 2000. Bioaccumulation of heavy metals in M. cyprinoids from the harbor waters of Visakhapatnam. Bulletin of Pure and Applied Sciences: Section E. Mathematics and Statistics. Vol. 19, pp: 77-85.
25
Pourang, N.; Nikouyan, A. and Dennis, J.H., 2005. Trace element concentrations in fish, surficial sediments and water from northern part of the Persian Gulf. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 109, pp: 293-316.
26
Qin, D.; Jiang, H.; Bai, S.; Tang, S. and Mou, Z., 2015. Determination of 28 trace elements in 3 farmed cyprinid fish species from northeast China. Food Control. Vol. 50, pp: 1-8.
27
Sen, A. and Semiz, A., 2007. Effects of metals and detergents on biotransformation and detoxification enzymes of leaping mullet (Liza saliens). Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 68, pp: 405-411.
28
Svobodova, Z.; Celechovska, O.; Machova, J. and Randak, T., 2002. Content of arsenic in market–ready rainbow trout. Acta Vet. Brno. Vol. 71, pp: 361-367.
29
Shah, A.Q.; Kazi, T.G.; Muhammad Balal Arain, M.B.; Jamali, M.K.; Afridi, H.I.; Jalbani, N.;Baig, J.A. and Kandhro, Gh. A., 2009. Accumulation of arsenic in different fresh water fish species- potential contribution to high arsenic intakes. Food Chemistry. Vol. 112, pp: 520-524.
30
Taweel, A.;Shuhaimi-Othman,M.andAhmad,A.K., 2013. Assessment of heavy metals in tilapia fish from the Langat River and Engineering Lake in Bangi, Malaysia, and evaluation of the health risk from tilapia consumption. Ecotoxicology. Environ. Saf. Vol. 93, pp: 45-51.
31
United States Environmental Protection Agency. 2000. Guidance for Assessing Chemical Contaminant, Data for Use in Fish Advisories, third ed., vol. 2. Risk assessment and fish consumption limits, Washington, DC.
32
Uysal, K.; Emre, Y. and Köse, E., 2008. The determination of heavy metal accumulation ratios in muscle, skin and gills of some migratory fish species by inductively coupled plasma-optical emission spectrometry in Beymelek Lagoon (Antalya/Turkey), Microchem. J. Vol. 90, pp: 67-70.
33
WHO (World Health Organization). 1996. Health criteria other supporting information. In:Guidelines for Drinking Water Quality, 2nd ed. Vol. 2, pp: 331-388.
34
Visnjic-Jeftic, Z.; Jaric, I.; Jovanovic, L.; Skoric, S.; Smederevac, L.M.; Nikcevic, M. and Lenhardt, M., 2010. Heavy metal and trace element accumulation in muscle, liver and gills of the Pontiac shad from the Danube River (Serbia), Microchem. J. Vol. 95, pp: 341-344.
35
Young, G.J. and Bleins, RD., 1981. Heavy metal concentrations in the Holston River Basin (Tennessee). Environment Contain Toxicology. Vol. 80, pp: 528-500.
36
Yi, Y.; Yang, Z. and Zhang, S., 2011. Ecological risk assessment of heavy metals in sediment and human health risk assessment of heavy metals in fishes in the middle and lower reaches of the Yangtze River basin. Environmental Pollution. Vol. 159, pp: 2575-2585.
37
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تاثیر رشد ماهی قزل آلای رنگین کمان پرورشی (Oncorhynchus mykiss) در مرحله پرواری با استفاده از مکمل گیاهی
مطالعه تاثیر استفاده از مکمل گیاهی درغذای پلتشده به منظور افزایش رشد قزل آلای رنگین کمان پرورشی در مرحله پرواری در پژوهشکده اکولوژی دریای خزر در سال های 97-1396 انجام شد. تعداد 180 عدد ماهی قزل آلای رنگین کمان پرورشی با میانگین وزنی 2/1±28/7 گرم در 9 عدد مخزن فایبرگلاس (به حجم 150 لیتر و با حجم آبگیری 100 لیتر) تقسیم گردیده و به مدت 7 هفته با سه جیره غذای حاوی صفر (شاهد)، 2 و 4 درصد مکمل گیاهی تغذیه شدند. میانگین بازماندگی در پایان آزمایش 100 درصد بوده است. بررسیها نشان داد که وزن اکتسابی در گروه شاهد برابر با 1/95±28/62 گرم و برای تیمار 2% و 4% به ترتیب 1/37±30 گرم و 4/13±30 گرم بوده است. ضریب رشد ویژه نیز برای تیمارهای شاهد 0/38±1/33 و برای تیمار 2% و 4% به ترتیب برابر 0/38±1/52 و 0/16±1/48 بوده است. هم چنین رشد اختصاص روزانه برای تیمار شاهد برابر 0/04±0/58 با ضریب تبدیل غذایی 0/58 گرم و برای تیمارهای 0/02 و 4% به ترتیب برابر 0/80±0/61 با ضریب تبدیل غذایی 0/79 و 0/50±0/60 با ضریب تبدیل غذایی 0/81 بوده است. هم چنین بین میانگین های وزن نهایی سه تیمار اختلاف معنی دار نبود (79/0<p) بررسی فوق نشان داد که مکمل گیاهی منجر به تفاوت معنی داری در شاخص رشد، ضریب تبدیل غذایی و رشد اختصاصی قزل آلای رنگین کمان پرورشی نگردیده است.
http://www.aejournal.ir/article_94012_0385b4a956f5b65db1c085dc22b13881.pdf
2019-07-23
247
252
رشد
قزل آلای رنگین کمان
مکمل گیاهی
حمید
رمضانی
hamid_ramzani@yahoo.com
1
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران
LEAD_AUTHOR
شهرام
دادگر
shdadgar@yahoo.com
2
مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
محمد
قدیری ابیانه
m.ghadiri@areo.ir
3
مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
رمضانی، ح.، 1394. بررسی ا ستفاده از مکمل گیاهی اشتها آور در رشد کپورمعمولی در مرحله پرواری. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی ایران. گزارش نهایی طرح تحقیقاتی. 25 صفحه. صفحات 15 تا 16.
1
زرگری، ع.، 1368. گیاهان دارویی. جلد اول. موسسه انتشارات و چاپ دانشگاه تهران. 947 صفحه. صفحات 647 تا 654 و 642 تا 646 و 682.
2
زرگری، ع.، 1368. گیاهان دارویی. جلد دوم. موسسه انتشارات و چاپ دانشگاه تهران. 850 صفحه.
3
Awad, E. and Austin, B., 2010. Use of lupin, Lupinus perennis, mango, Mangifera indica, and stinging nettle, Urtica dioica, as feed additives to prevent Aeromonas hydrophila infection in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Journal of Fish Diseases. Vol. 33, pp: 413-420.
4
Al-Salahy, M.B., 2002. Some physiological studies on the effect of onion and garlic juices on the fish, Clarias lazera. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 27, pp: 129-142.
5
De-Schrijver, R. and Ollevier, F., 2000. Protein digestion in juvenile rurbot (Scophthalmus maximus) and effects of dietary administration of vibrioproteolyticus. Aquaculture. Vol. 186, No. 6, pp: 107-116.
6
Dorucu, M.; Ozesen, C.S.; Ispir, U.; Altinterim, B. and Celayir, Y., 2009. The Effect of Black Cumin Seeds, Nigella sativa, on the Immune Response of Rainbow Trout, Oncorhynchus mykiss. Mediterranean Aquaculture Journal. Vol. 2, No. 2, pp: 1-7.
7
Gabor, E.F.; Şara, A. and Barbu, A., 2010. The effects of some Phyto-additives on growth, health and meat quality on different species of fish. Scientific Papers: Animal Sciences and Biotechnologies. Vol. 43, No. 1, pp: 61-65.
8
Fazlolahzadeh, F.; Keramati, K.; Nazifi, S.; Shirian, S. and Seifi, S., 2011. Effect of Garlic (Allium sativum) on Hematological Parameters and Plasma Activities of ALT and AST of Rainbow trout in Temperature Stress. Australian Journal of Basic and Applied Sciences. Vol. 5, No. 9, pp: 84-90.
9
Fooks, L.J.; Fuller, R. and Gibson, G.R., 1999. Prebiotics, Probiotics and human gut microbiology. International Dairy Journal. Vol. 9, No. 3, pp: 53-61.
10
Irianto, A. and Austin, B., 2002. Use of probiotics to control furunculosis in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss wabaum). J. Fish Dis. Vol. 25, No. 5, pp: 1-10.
11
Nya, E.J. and Austin, B., 2009. Use of dietary ginger, Zingiber officinale Roscoe, as an immunostimulant to control Aeromonas hydrophila infections in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Journal of Fish Diseases. Vol. 32, pp: 971-977.
12
Ringo, E.; Bendiksin, H.R.; Gaunsen, S.J.; Sundsfjord, A. and Olsen, R.F., 1998. The effect of dietary fatty acid on lactic acid bacteria associated with the epithelial mucosa and form faecolia of Arctic charr, Salvelinus alpines. L. J. Apple. Microbiol. pp: 855-864.
13
Tacon, A. and Albert, G.J., 1990. Standard method for nutritional and feeding of farmed fish and shrimp. Argent Libration press. pp: 4-27.
14
Tovar, D.; Amzbonino, J.; Cahu, C.; Gatesoupe, F.J.; Vazquez-Juarez, R. and leserl, R., 2002. Effect of yeast incorporation in compound diet on digestive enzyme activity in sea bass (Dicentrarchus larvae). Aquaculture. Vol. 204, No. 2, pp: 113-123.
15
Webster, C.D. and Lim, C.E., 2002. Nutrient Requiremnts and Feeding of Finfish for Aquaculture. CABI publishing. 418 p.
16
ORIGINAL_ARTICLE
اثر رنگ نور و دورههای نوری بر درصد تفریخ و بقا و شاخص های رشد لارو در بچهماهی قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss)
نور یکی از مهم ترین عوامل موثر بر رشد و بقای لارو ماهیان است. در آزمایشی به مدت 55 روز، اثرات رنگ نور و دوره نوری بر درصد تفریخ، بقا و شاخص های رشد لارو در بچه ماهیان قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) مورد ارزیابی قرار گرفت. اثر سه رنگ نور قرمز، سفید و زرد و چهار دوره نوری ( 20L/4، 16L/8، 10L/14، 4L/20 و0L/24) در روزهای 10، 20 و 55 پس از مرحله تخم چشم زده بر شاخص های درصد تخم گشایی، بقا و رشد بررسی شد. نتایج این تحقیق نشان داد بیش ترین درصد تخم گشایی (94/86%) در تیمار یا نور قرمز با مدت تاریکی 20 ساعت و کم ترین میزان (77/13% و 77/33%) آن در نورهای زرد و قرمز در 24 ساعت روشنایی مشاهده شد (0/05>P). بیست روز پس از تفریخ، بیش ترین درصد بقا و میانگین وزن لارو، در تیمار با دوره نوری کوتاه تر و رنگ های قرمز و زرد مشاهده شد که اختلاف معنی داری با سایر تیمارها داشت (0/05>P)، با این وجود تیمارهای مختلف دوره نوری و رنگ نور اثر معنی داری بر میانگین طول لارو در پایان روز بیستم نداشتند. پس از 55 روز تغذیه، لاروهایی که تحت مدت زمان روشنایی بیش تر و نور زرد قرار داشتند افزایش معنی دار وزن، بهترین ضریب تبدیل غذایی و بیش ترین نرخ رشد ویژه را مشاهده نمودند (0/05>P). به طورکلی در مرحله پیش از هچ نور قرمز با مدت تاریکی طولانی تر و بعد از هچ نور زرد وسفید با دوره روشنایی طولانی تر جهت با لابردن تفریخ و رشد موثر می باشند.
http://www.aejournal.ir/article_94013_303d17a2cefb4bfdd797fdfb6335d7fc.pdf
2019-07-23
253
258
قزل آلای رنگین کمان
دوره نوری
رنگ نور
رشد
درصد بقا
حبیب اله
سنچولی
habibsanchooli@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
عباسعلی
حاجی بگلو
alihajibeglou@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد
سوداگر
sudagar_m@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
ستاری، م.؛ شاهسونی، د. و شفیعی، ش.، 1383. ماهی شناسی (2). نشر حق شناس. 61 صفحه.
1
کاظمی، ر.ا.؛ نوری، ف.؛ بانی، ع.؛ نجدگرامی، ا.ح. و یزدانی ساداتی، م. ع.، 1394. اثر دوره های نوری و شدت نور بر فاکتورهای رشد و بازماندگی تاس ماهی ایرانی مرحله لاروی تا انگشت قد. مجله بوم شناسی آبزیان. سال 5، شماره 4، صفحات 29 تا 46.
2
گلشاهی، ک.؛ امانی، ک.؛ مرادنژاد، ح.م. و آراملی، م. ص.، 1388. اثرات رنگ نور و دوره های نوری روی رشد و بازماندگی بچه ماهیان کلمه (Rutilus rutilus caspicus) دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. سال 3، شماره 3، صفحات 1 تا 10.
3
یگانه، س.؛ رمضان زاده، ف.؛ خلیلی، خ. و بابایی، س.ص.، 1392. بررسی اثرات طول دوره نوری بر فعالیت برخی آنزیم های گوارشی معده ای و روده ای در لارو و نوجوان قزل آلای رنگین کمان. مجله علمی شیلات ایران. سال 23، شماره 2، صفحات 103 تا 116.
4
Boeuf, G. and Le Bail, P.Y., 1999. Does light have an influence on fish growth? Aquacultur. Vol. 177, pp: 129-152.
5
Brown, B.A., 1988. Routine hematology procedures. In: (B.A. Brown ed.). Hematology: Principle and procedures. Lea and Febiger, Philadelphia, PA, USA. pp: 7-122.
6
Boulcott, P.D., Walton, K., and Braithwaite, V.A. 2005. The role of ultraviolet wave length in the mate-choice decisions of femaile three pined stickle backs. Journal of Experimental Biology. Vol, 208. pp: 1453-1458.
7
Barry, T.P.; Lapp, A.F.; Kayes, T.B. and Malison, J.A., 1993. Validation of a microtitre plate ELISA for measuring cortisol in fish and comparison of stress responses of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and lake trout (Salvelinus namaycush). Aquaculture. Vol. 117, No. 3-4, pp: 351-363.
8
Cheng, C. and Flamarique, I.N., 2004. Opsin expression: new mechanism for modulating colour vision. Nature. Vol. 428. No. 6980, pp: 279-279.
9
Constantinos, Th.; Moustakas, O. and Watanabe, A., 2004. Combined effects of photoperiod and salinity on growth, survival, and osmoregulatory ability of larval southern flounder Paralichthys lethostigma. Aquaculture. Vol. 229, pp: 159-179.
10
Dadfar, F.; Bahaoddini, A.; Esmaeili, H.R. and Fopp Bayat, D., 2017. The effects of different artificial light colors on the growth rate of embryo and juvenile rainbow trout. Polish journal of natural science. Vol. 32, No. 1, pp: 179-189.
11
Downing, G. and Litval, M.K., 1999. The effect of photoperiod, tank color and light intensity on growth of larval haddock. AquacultureInternational. Vol. 7, pp: 369-382.
12
Elsbaay, A.M., 2013. Effects of photoperiod and different artificial light colors on Nile tilapia growth rate. Journal of Agriculture Veterenian Science. Vol. 3, No. 3, pp: 5-12.
13
Eshaghzadeh, H.; Rafiee, Gh.; Eagderi, S.; Kazemi, R.; Poorbagher, H., 2013. Effects of different photoperiods on the survival and growth of beluga sturgeon (Husohuso) larvae. International Journal of Aquatic Biology. Vol. 1, pp: 36-41.
14
Gardner, C. and Maguire, G.B., 1998. Effect of photoperiod and light intensity on survival, development and cannibalism of larvae of the Australian giant carb psudocarcinus gigas (lainarck). Aquaculture. Vol. 165, pp: 51-63.
15
Giriss., S.; Shahoos, K.; Sahub, B.; Sahu, A.K.; Mohanty, S.N.; Mukhhopadhyayp, K. and Ayyappan, S., 2002. Larval survival and growth in Wallago attu (Bloch and Schneider). Effects of light, photoperiod and feeding regimes. Journal of Aquaculture. Vol. 213, No. 1-4, pp: 151-161.
16
Head, A.D. and Malison, J.A., 2000. Effects of lighting spectrum and disturbance level on the growth and stress responses of yellow perch Perca flavescens. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 31, pp: 73-80.
17
Hechet, T. and Pienaar, A.G., 1993. Areviw of cannibalism and its implications fish larvae culture. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 24, pp: 246-261.
18
Kasumyan, A.O., 1999. Olfaction and taste in sturgeon behavior. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 5, pp: 228-232.
19
Ktagawa, A.T.; Costa, L.S.; Paulino, R.R.; Luz, R.K.; Rosa, P.V.; Guerra-Santos, B. and Fortes-Silva, R., 2015. Feeding behavior and the effect of photoperiod on the performance and hematological parameters of the pacamã catfish (Lophiosilurus alexandri). Applied Animal Behaviour Science. Vol. 171, pp: 211-218.
20
Lowry, O.H.; Rosebrough, N.J.; Farr, A.L. and Randall, R.J., 1951. Protein measurement with the folin phenol reagent. The Journal of Biological Chemistry. Vol. 193, pp: 265-275.
21
Marchesan, M.; Spoto, M.A.; Verginella, L. and Ferrero, E.A., 2005. Behavioral effects of artificial light on fish species of commercial interest. Fisheries Research. Vol. 73, pp: 171-1850.
22
Masli, A.; Senoo, S.; Kawamura, G. and Fui, C.F., 2014. Effects of Different Light Intensities on Fry Growth, Survival and Cannibalism Control of Asian Seabass (Lates calcarifer). International Research Journal of Biological Sciences. Vol. 3, No. 5, pp: 45-52.
23
Migaud, H.; Davie, A. and Taylor, J.F.T., 2010. Current knowledge on the photoneuroendocrine regulation of reproduction in temperate fish species. Journal of Fish Biology. Vol. 76, pp: 27-68.
24
Mustapha, M.; Okafor, B.; Olaoti, K. and Oyelakin, O., 2012. Effects of three different photoperiods on the growth and body coloration of juvenile African catfish, Clarias gariepinus (Burchell). Archives of Polish Fisheries. Vol. 20, No. 1, pp: 55-59.
25
Naor, A.; Segev, N.; Bressler, K.; Peduel, A.; Hadas, E. and Ron, B., 2003. The influence of the pineal organ and melatonin on the reproductive system and of light intensity and wavelength on melatonin in the gilthead sea bream (Sparus aurata). Aquaculture. Vol. 55, pp: 230-236.
26
Rodrýguez, A. and Gisbert, E., 2002. Eye development and the role of vision during Siberian sturgeon early ontogeny. Journal Applied Ichthyology. Vol. 18, pp: 280-285.
27
Planas, M. and Cunha, I., 1998. Larviculture of marine fish: problems and perspectives. Aquaculture. Vol. 177, pp: 171-190.
28
Ruchin, A.B., 2004. Influence of coloured light on growth rate of juveniles of fish. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 30, pp: 175-178.
29
Puvanendran, V. and Brown, J., 2002. Foraging, growth and survival of Atlantic cod larvae reared in different light intensities and photoperiods. Aquaculture. Vol. 214, pp:131-151.
30
Tailor, J., 2004. The effects of photoperiod manipulation on growth and reproduction in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Theses from Faculty of Natural Sciences legacy departments. University of Stirling. 348 p.
31
Taylor, J.F.; North, B.P.; Porter, M.J.R.; Bromage, N.R. and Migaud, H., 2006. Photoperiod can be used to enhance growth and improve feeding efficiency in farmed rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Aquaculture. Vol. 256, pp: 216-234.
32
Vandersalm, A.L.; Martinez, M. and Wendelarbonga, S.E., 2004. Effects of husbandry conditions on the skin colour and stress response of red porgy Pagrus Pagrus. Aquaculture. Vol. 241, pp: 371-380.
33
Villamizar, N.; Blanco-Vives, B.; Migaud, H.; Davie, A.; Carboni, S. and Sánchez-Vázquez, F., 2011. Effects of light during early larval development of some aquacultured teleosts, A review. Aquaculture. Vol. 315, pp: 86-94.
34
Volpato, G.L.; Bovist, T.S.; Freitas., R.H.; Silva, A.D.; Dellicio, H.S.; Giaquinto, P. and Barreto, R.E., 2013. Red light stimulates feeding motivation in fish but does not improve growth. PlosOne. Vol. 8, No. 3, pp: 1-5.
35
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر تجویز خوراکی سطوح مختلف پروبیوتیک Lactobacillus casei بر شاخص های رشد و بازماندگی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
پروبیوتیکها مکمل های غذایی زندهای هستند که از طریق بهبود بار میکروبی روده میزبان، تاثیرات سودمندی را در آن ایجاد کرده، سبب بهبود جذب مواد غذایی از روده میشوند. هدف از این مطالعه بررسی اثر تجویز خوراکی سطوح پروبیوتیک (Lactobacillus casei(PTCC1608 بر شاخص های رشد و بازماندگی ماهی قزل آلای رنگین کمان بود. 4800 قطعه بچه ماهی قزلآلا، با وزن متوسط 5/5±32/6 گرم در چهار تیمار با سه تکرار به صورت تصادفی تقسیم شدند (هر تکرار با 400 قطعه ماهی). ماهیان تیمارهای A، B و C به ترتیب با جیرههای غذایی حاوی 106×5، 107×5 و 108×5 باکتری در میلی لیتر باکتری لاکتوباسیلوس کازئی به مدت 60 روز غذادهی شدند. ییمار شاهد با شرایط کاملاً مشابه اما بدون اضافه کردن باکتری به خوراک درنظر گرفته شد. زیست سنجی در روزهای صفر، 30 و 60 صورت گرفت و شاخص های رشد (ضریب رشد ویژه، درصد افزایش وزن، ضریب تبدیل غذایی، فاکتور وضعیت، بازده پروتئین، میزان رشد روزانه، میزان رشد نسبی، بازده خوراک و بازماندگی) بین تیمارهای مختلف مقایسه گردید. نتایج نشان داد افزودن پروبیوتیک L. casei با غلظتCFU/mL 106×5 باعث بهبود معنی دار شاخص های رشد در ماهی قزل آلا می شود، به طوری که ضریب رشد ویژه، درصد افزایش وزن و میزان رشد نسبی بهترین عملکرد را در تیمار A پس از 30 و 60 روز از شروع آزمایش داشتند و با تیمار شاهد اختلاف معنی دار نشان دادند (0/05>P)، درحالی که در تیمار تغذیه شده با جیره حاوی بالاترین میزان پروبیوتیک در هر دو مرحله نمونه گیری برخی شاخص های رشد و بازماندگی نسبت به گروه شاهد کاهش نشان دادند (0/05>P). تغییریدر شاخص های رشد در تیمار تغذیه شده با جیره حاوی CFU/mL106×5 نسبت به تیمار شاهد در مراحل مختلف نمونه گیری مشاهده نشد. میزان بقا در طول دوره در بین تیمارهای مختلف نیز تفاوت معنی دار نشان داد، به طوری که بیش ترین تلفات مربوط به تیمار تغذیه شده با L. casei با غلظت CFU/mL108×5 بود که تفاوت معنی داری با تیمار شاهد داشت (0/05>P). به طورکلی نتایج تحقیق نشان داد افزودن پروبیوتیک L. casei با غلظت CFU/mL106×5 به خوراک ماهی قزل آلای رنگین کمان انگشت قد، به عنوان مناسب ترین غلظت باعث بهبود شاخص های رشد ماهی شد، ولی غلظت های بالاتر این پروبیوتیک اثرات منفی بر رشد دارد.
http://www.aejournal.ir/article_94041_81e2e72b9a8c38e01d3ddd951c6a0840.pdf
2019-07-23
259
266
L. casei
Oncorhynchus mykiss
پروبیوتیک
رشد و بازماندگی
برزو
الماسی بردمیری
borzoo.almasi@yahoo.com
1
گروه شیلات، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
AUTHOR
مجتبی
علیشاهی
alishahimoj@gmail.com
2
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
نرگس
جوادزاده
nargesjavadzadeh@yahoo.com
3
گروه شیلات، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
AUTHOR
آذری تاکامی، ق.، 1363. اصول تکثیر و پرورش ماهی. انتشارات وزارت کشاورزی. معاونت شیلات و آبزیان. تهران. 167 صفحه.
1
اکرمی، ر.؛ قیلیچی، ا. و ابراهیمی، ا.، 1387. تأثیر سطوح مختلف پربیوتیک اینولین بر رشد و زنده مانی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). اولین کنفرانس ملی علوم شیلات و آبزیان ایران. دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان. صفحات 10 تا 12.
2
پورامینی،م. و حسینی فر، ح.، 1386. کاربرد پروبیوتیک ها و پربیوتیک ها در آبزی پروری. انتشارات موج سبز. 104 صفحه.
3
توکمه چی، ا.؛ شمسی، ح.؛ مشکینی، س.؛ دلشاد، ر. و قاسمی مغانجوقی،و.، 1391. بهبود شاخص های رشد و برخی از پارامترهای پاسخ ایمنی ماهی قزل آلای رنگین کمان Oncorhynchus mykiss با استفاده توأم از ویتامین C و پروبیوتیک لاکتوباسیلوس رامنوسوس. مجله علمی شیلات ایران. شماره 3، صفحات 13 تا 22.
4
جمالی، ه.؛ جعفریان، ح.؛ پاتیمار، ر. و سلطانی، م.، 1391. به کارگیری باسیلوس های چندگانه در تغذیه لارو ماهی قزل آلای رنگین کمان Oncorhynchus mykiss، از طریق غنی سازی با ناپلی آرتمیا پارتنوژنیکا(Artemia parthenogenetica) ، مجله بهره برداری و پرورش آبزیان. شماره 3، صفحات 85 تا 101.
5
ضیایینژاد، س.؛ رفیعی، غ.؛ میرواقفی، ع. و فرحمند، ح.، 1394. بررسی تاثیر باکتریهای باسیلوس سابتیلیس و لاکتوباسیلوس پلانتاروم در شاخصهای رشد، بازماندگی و فلور میکروبی دستگاه گوارش لارو ماهی شانک زرد باله (Acanthopagrus latus) با شیوههای رسانش مختلف. مجله منابع طبیعی ایران. شماره 68، صفحات 287 تا 298.
6
علوی یگانه، م.؛ کناری، ع.؛ رضایی، م. و محمدی آزرم، ح.،1382. افزایش مقاومت به تنش های محیطی pH و دما در لاروهای قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchusmykiss) از طریق تغذیه با مکمل پودر گاماروس. مجله علوم دریای ایران. شماره 1، صفحات 57 تا 66.
7
قبادی، ش.؛ رازقی، م.؛ اکرمی، ر.؛ امانی دنجی،ک. و اسماعیلی ملاء، ع.، 1390. تأثیر سطوح مختلف پروبیوتیک مانان الیگوساکارید بر شاخص های رشد، بازماندگی، ترکیب لاشه و تراکم لاکتوباسیل روده در فیل ماهی (Huso huso) جوان پرورشی. مجله علوم و فنون دریایی. دوره 10، شماره 4، صفحات 67 تا 77.
8
وثوقی، غ. و مستاجیر، ب.، 1385. ماهیان آب شیرین. چاپ هفتم، انتشارات دانشگاه تهران. 317 صفحه.
9
Adamek, Z.; Hamackova, J.; Kouril, J.; Vachta, R. and Stibranyiova, I., 1996. Effect of Ascogen probiotics supplementation on farming success in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and wels (Silurus glanis) under conditions of intensive culture. Krmiva. Vol. 38, pp: 11-20.
10
Askarian, F.; Kousha, A.; Salma, W. and Ringo, E., 2011. The effect of lactic acid bacteria administration on growth, digestive enzyme activity and gut microbiota in Persian sturgeon (Acipenser persicus) and beluga (Huso huso) fry. Aquac Nutr. Vol. 17, pp: 488-497.
11
Babu, S.M.; Banerjee, C.S. and Abraham, T.J., 2003. Effect of gram positive bacterium, Lactobacillus sp. on the growth performance of gold fish, Carassius auratus Linnaeus, 1758. Environ Ecol. Vol. 21, pp: 17-19.
12
Bagenal, T., 1978. Methods for assessmet of fish production in freshwaters. Blackwall scientific pub. Oxf. London. 365 p.
13
Bagheri, T.; Hedayati, S.A.; Yavari, V.; Alizade, M. and Farzanfar, A., 2008. Growth, survival and gut microbial load of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fry given diet supplemented with probiotic during the two months of first feeding. Turkish J Fish Aquat Sci. Vol. 8, pp: 43-48.
14
Farzanfar, A.; Lashto Aghaei, G.; Alizadeh, M.; Bayati, M. and Ghorban, R., 2007. Study on growth performance of Rainbow trout, Oncorhynchus mykiss, Larvae with different concentration of probiotic in diet. In: proceedings of Aquaculture. SAN ANTONIO, TEXAS, USA.
15
Fuller, R., 1989. Probiotics in man and animals. J Appl Bacteriol. Vol. 66, pp: 365-78.
16
Gatesoupe, F.J., 1999. Review: The use of probiotics in aquaculture. Aquacult. Vol. 180, 147-165.
17
Gibson, G.R. and Roberfroid, M.B., 1995. Dietary modulation of the colonic microbiota: introducing the concept of prebiotics. J Nutr. Vol. 125, pp: 1401-1412.
18
Giri, S.S.; Sukumaran, V. and Oviya, M., 2013. Potential probiotic Lactobacillus plantarumVSG3 improves the growth, immunity, and disease resistance of tropical fresh water fish, Labeo rohita. Fish Shellfish Immunol. Vol. 34, pp: 660-666.
19
Jafarian, H.; Soltani, M. and Abedian, A.M., 2007. The influence some of probiotic bacillus on feeding efficiency and nutrient body composition of Beluga (Huso huso) larvae. J. agric. nat. resour. sci. Vol. 14, pp: 60-71.
20
Jafaryan, H.; Morovat, R.; Shirzad, H., 2008. The use of bioencapsulated Daphnia magna by probiotic bacillus and their effect on the growth of Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) larvae. Iran. J. Biol. Vol. 21, pp: 24-35.
21
Lara-Flores, M.; Olvera-Novoa, M.A.; Guzman-Mendez, B.E. and Lopez-Madrid, W., 2003. Use of the bacteria Streptococcus faecium and Lactobacillus acidophilus, and the yeast Saccharomyces cerevisiae as growth promoters in Nile tilapia. Aquacult. Vol. 216, pp: 193-201.
22
Li, P. and Gatlin,D.M., 2005. Evaluation of the prebiotic Grobiotic-A and brewers yeast as dietary supplements for sub-adult hybrid Striped bass (Morone chrysops × M.saxatilis) challenged in situ with Mycobacterium marinum. Aquacult. Vol. 248, pp: 197-205.
23
Mateo, C.D., 2005. Aspects of nucleotide nutrition in pigs. Ph. D Thesis, South Dakota State University, USA. 171 p.
24
Merrifield, D.L.; Bradley, G.; Baker, R.T.M. and Davies, S.J., 2009. Probiotic applications for rainbow trout. Effects on growth performance, feed utilization, intestinal microbiota and related health criteria post antibiotic treatment. Aquacult. Nutr. Vol. 16, pp: 496-503.
25
Olsen, R.E.; Myklebust, R.; Kryvi, H.; Mayhew, T.M. and Ringo, E., 2001. Damaging effect of dietary inulin on intestinal enterocytes in Arctic charr (Salvelinus alpinus). Aquacult. Res. Vol. 32, pp: 931-934.
26
Rengpipat, S.; Rueangruklikhit, T. and Piyatiratitivorakul, S., 2008. Evaluations of lactic acid bacteria as probiotics for juvenile seabass. Aquacult Res. Vol. 39, pp: 134-143.
27
Salas-Leiton, E.; Anguis, V.; Martín-Antonio, B.; Crespo, D.; Planas, J.V.; Infante, C.; Cañavate, J.P. and Manchado, M., 2010. Effects of stocking density and feed ration on growth and gene expression in the Senegalese sole (Solea senegalensis): potential effects on the immune response. Fish Shellfish Immunol. Vol. 28, pp: 296-302.
28
Sattari, M., 2002. Fish biology 1, anatomy and physiology. Naghshe Mehr Publications, Tehran. 659 p.
29
Shyne, A.P.S.; kohli, M.P.S. and Sundaray, J.K., 2013. Effect of dietary supplementation of periphyton on growth performance and digestive enzyme activities in Penaeus monodon. Aquacult. Vol. pp: 392-395.
30
Siwicki, A.K.; Anderson, D.P. and Rumsey, G.L., 1994. Dietary intake of immunostimulants by rainbow trout affects non-specific immunity and protection against furunculosis. Vet Immunol Immunopathol. Vol. 41, pp: 125-139.
31
Son, V.M.; Chang, C.; Wu, M.; Guu, Y.; Chiu, C.and Cheng, W., 2009. Dietary administration of the probiotic, Lactobacillus plantarum, enhanced the growth, innate immune responses, and disease resistance of the grouper. Fish Shellfish Immunol. Vol. 26, pp: 691-698.
32
Staykov, Y.; Spring, P.; Denev, S. and Sweetman, J., 2007. Effect of a mannan oligosaccharide on the growth performance and immune status of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquac Int. Vol. 15, pp: 153-161.
33
Suzer, C.; Coban, D.; Kamaci, H.O.; Saka, S.; Firat, K.; Otgucuoglu, O. and Kucuksari, H., 2008. Lactobacillus spp. bacteria as probiotics in gilthead sea bream larvae: Effects on growth. Aquacult. Vol. 280, pp: 140-145.
34
Tacon, A.G.J., 2005. Trends in global aquaculture and aquafeed production: 1984-1996 highlights. In: Brufau, J. and Tacon, A., (ed). Feed manufacturing in the Mediterranean region: Recent advances in research and technology. Zaragoza: Ciheam, 1999. (Cahiers Options Méditerranéennes No. 37), pp: 107-122.
35
Wang,Y.B.andXu,Z.,2006. Effect of probiotics for common carp based on growth performance & digestive enzyme activities. Anim Feed Sci Technol. Vol. 127, pp: 283-292.
36
Wang, Y.B.; Tian, Z.; Yao, J. and Li, W., 2008. Effect of probiotics, Enteroccus faecium, on Tilapia (Oreochromis niloticus) growth performance and immune response. Aquacult. Vol. 277, pp: 203-207.
37
Webster, C.D.; Tru, L.G. and Tidewell, J.H., 1997. Growth and body composition of channel catfish (Ictaharus punctatus) fed diets containing various percentage of Canola meal. Aquacult. Vol. 150, pp: 103-113.
38
Yanbo,W.andZirong,X.,2006. Effect of probiotics for common carp based on growth performance & digestive enzyme activities. Anim Feed Sci Technol. Vol. 127, pp: 283-292.
39
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه اثر نوسانات دما بر شاخص های رشد و سن گونه (1870 ,Schizothorax pelzami (Kessler در دو زیستگاه رودخانه و دریاچه شمال شرق ایران
در این پژوهش ساختار سنی و ویژگی های رشد ماهی خواجو در دو زیستگاه با ویژگی های متفاوت (رودخانه فریزی و دریاچه چشمه سبز در استان خراسان) در بازه زمانی دی ماه 1388 تا دی ماه سال 1389 مطالعه شده است، پارامترهای سن و رشد با بررسی 495 قطعه استخوان سرپوش آبششی 261 نمونه از زیستگاه رودخانه ای و 234 گونه از زیستگاه دریاچه ای جمعیت های ماهیان خواجوی با دامنه طولی 69 تا 274 میلی متر تعیین گردید. نرخ رشد لحظه ای ماهیان خواجوی جوان (یک و دو ساله) در زیستگاه رودخانه ای(میانگین دمای بالاتر) بیش تر از جمعیت ساکن در زیستگاه دریاچه ای (میانگین دمای پائین تر) مشاهده شد. هم چنین نتایج نشان داد که S. pelzami در زیستگاه دریاچه ای دارای طول عمر بیشتری هستند. ماهیان خواجو در زیستگاه رودخانه ای در 2-3 سالگی و در زیستگاه دریاچه ای در سن 5-4 سالگی به بلوغ جنسی رسیدند. مقادیر پارامتر رشد ون برتالانفی دوجمعیت، نشان داد که L∞ در جمعیت زیستگاه دریاچه ای (514/70♀ ، 646/464♂) بالاتر از جمعیت زیستگاه رودخانه ای(456/92 ♀، 303/15♂) بود. شاخص فای پریم مونرو (φ′) در زیستگاه دریاچه ای (9/386 ♀، 9/225♂) و در زیستگاه رودخانه ای (9/253♀، 9/074♂)محاسبه گردید. غلبه نسبت جنسی در زیستگاه رودخانه مربوط به جنس نر و در زیستگاه دریاچه به جنس ماده اختصاص داشت. نتایج این پژوهش نشان می دهد که تفاوت در شرایط زیستگاهی به ویژه دمای آب و موقعیت جغرافیایی دو زیستگاه سبب شکل گیری استراتژی های متفاوت از نظر ساختار سن و الگوی رشد در هریک از جمعیت ها گردیده است.
http://www.aejournal.ir/article_94203_62f0302dc686e1b82869223a50bc3f26.pdf
2019-07-23
267
276
ماهی خواجو
رودخانه فریزی
دریاچه چشمه سبز
سن و رشد
مهدی
بدری
mahdi.badri@gmail.com
1
گروه محیط زیست و انرژی، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
اصغر
عبدلی
asabdoli@yahoo.com
2
گروه تنوع زیستی و مدیریت اکوسیستم های پژوهشکده علوم محیطی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
بهرام
حسن زاده کیابی
b.h.kiabi@gmail.com
3
گروه زیست شناسی و زیست فناوری دریا و آبزیان دانشکده علوم و فناوری زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
AUTHOR
محمود
کرمی
mahmoudkarami43@gmail.com
4
گروه شیلات و محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
بدری، م.؛ عبدلی، ا.؛ حسن زاده کیابی، ب. و کرمی، م.، 1393. مطالعه تاثیر نوسانات دما در طول، وزن و فاکتور وضعیت ماهی خواجو Schizothorax pelzami (Kessler, 1870 در دو زیستگاه دریاچه و رودخانه . مجله منابع طبیعی ایران ( شیلات ) دانشگاه تهران. دوره 67، شماره 4، صفحات 479 تا 489.
1
زمردیان، م.، 1382. نگرشی بر چشمه ها و دریاچه های پیرامونی مشهد از دیدگاه اکوتوریسم. مجله جغرافیا و توسعه. شماره 3، صفحات 73 تا 94.
2
عبدلی، ا.؛ رسولی، پ.؛ یزدادن دادن بی بالان، ح. و عبدلی، ا.،1386. بررسی برخی جنبه های اکولوژیکی گونه Schizothorax pelzami از رودخانه لایین سو در شمال شرق ایران. علوم محیطی. سال 4، شماره 3، صفحات 23 تا 34.
3
ولایتی، س.؛ غیور، ح. و شفیعا، ص.، 1383. بررسی رژیم هیدرولوژیکی رودخانه فریزی (زیرحوضه کشف رود) و نقش آن در تغذیه آبخوان دشت مشهد. مجله جغرافیا و توسعه. شماره 1، صفحات 47 تا 72.
4
Abdoli, A.; Rasooli, P.; Yazdandad bibalan, H. and Abdoli, L., 2007. Study on Some Ecological Aspects of Snow Trout (Schizothorax pelzami) from Laiinsoo River in Northeastern Iran. Environmental Sciences. Vol. 4, pp: 69-76.
5
Abdoli, A.; Pont, D. and Sagnes, P., 2007. Intrabasin variations in age and growth of bullhead: the effects of temperature Journal of Fish Biology. Vol. 70, pp: 1224-1238. doi:10.1111/j.
6
Abdoli, A.; Pont, D. and Sagnes, P., 2005. Influence of female age, body size and environmental conditions on annual egg production of the bullhead Cottus gobio (Bez drainage, France). Journal of Fish Biology. Vol. 67, pp: 1327-1341. doi: 10.1111/j.1095- 8649.2005.00829.x.
7
Bagenal, L.T., 1978. Methods for assessment of fish production in freshwater, 3rd edn. Oxford, London, Edinburgh & Melbourne. 365 p.
8
Bao-Shan, M.; Cong-Xin, X.; Bin, H.; Xue-Feng, Y. and Hai-Ping, H., 2010. Age and Growth of a Long-Lived Fish Schizothorax o’connori in the Yarlung Tsangpo River, Tibet.Zoological Studies. Vol. 49, No. 6, pp: 749-759.
9
Basoline, G.; Guisande, C.; Patti, B.; Mazzola, S.; Cuttitta, A.; Bonanno, A. and Kallianiotis, A., 2004. Linking habitat conditions and growth in European anchovy (Engraulis encrasicolus). Fish Research. Vol. 68, pp: 9-19.
10
Beamish, R.J. and McFarlane, G.A., 1983. The forgotten requirement for age validation in fisheries biology. Trans. Am. Fish. Soc. Vol. 112, pp:735-743.
11
Berg, L.S., 1949. Freshwater fishes of the USSR and adjacent countries. Jerusalem. Vol. 2.
12
Brander, K.M., 1995. The effect of temperature on growth of Atlantic cod (Gadus morhua L.). ICES Journal of Marine Science. Vol. 52, pp: 1-10.
13
Brett, J.R., 1964. The respiratory metabolism and swimming performance of young sockeye salmon. Journal of the Fisheries Research Board of Canada. Vol. 21, pp: 1183-1226.
14
Brett, J.R. and Groves, T.D.D., 1979. Physiological energetics. In Fish Physiology, Vol VIII (Hoar, W.S.; Randall, D.J. and Brett, J.R., eds). New York: Academic Press. pp: 279-352.
15
Bull, H.O., 1952. An evaluation of our knowledge of fish behavior in relation to hydrography. Rapp. P.V. Réun. Cons. Int. Explor. Mer. Vol. 131, pp:8-23.
16
Coad, B.W. and Naomi, K.V., 2004. On the systematics and distribution of the snow trout Schizothorax pelzami Kessler, 1870, in Iran (Actinopterygii: Cyprinidae). Zoology in the Middle East. ISSN 0939-7140. Kasparek Verlag. Heidelberg. Vol. 32, pp: 57-62.
17
Diana, J.S., 2004. Biology and ecology of fishes, second edition. Cooper Publishing Group.Traverse City, MI.
18
Fry, F.E.J., 1957. The aquatic respiration off ish. In The Physiology of Fishes, Vol. I (Brown, M.E., ed.). New York: Academic Press. pp: 1-63.
19
Fox, P.J., 1978. Preliminary observations on different reproduction strategies in the bullhead (Cottus gobio L.) in northern and southern England. Journal of Fish Biology. Vol. 12, pp: 5-11.
20
Goolish, E.M. and Adelman, I.R., 1984. Effects of ration size and temperature on the growth of juvenile common carp (Cyprinus carpio L.). Aquaculture. Vol. 36, pp: 27-35.
21
Handbook of fish biology and fisheries. 2003. Fish biology. Blackwell Publishing, Oxford, England. Vol. 1.
22
He, Z.T., 2005. Studies on age and growth of Schizothorax o’connori in Lhasa River in Tibet. Master’s thesis, Huazhong Agricultural Univ. Wuhan, China.
23
Hofer, R.; Krewedl, G. and Koch, F., 1985. An energy budget for anomnivorous cyprinid: Rutilus rutilus (L.). Hydrobiologia. Vol. 122, pp:53-59.
24
Hofmann, N. and Fischer, P., 2003. Impact of temperature on food intake and growth in juvenile burbot. Journal of Fish Biology. Vol. 63, pp: 1295-1305.
25
Hutchings, J.A., 2002. Life histories of fish. Hart, P.J.B. and Reynolds, J.D., editors. pp: 149-174.
26
Jeevanthi De Silva, N., 1985. Production of the common sculpin, Cottus gobio (L.) in a Belgian chalk stream, the Samson, and the contribution of benthic macroinvertebrate fauna to its diet. PhD Thesis, Namur University, Belgium.
27
Keckeis, H.; Kamler, E.; Bauer-Nemeschkal, E. and Schneeweiss, K., 2001. Survival, development and food energy partitioning of nase larvae and early juveniles at different temperatures. Journal of Fish Biology. Vol. 59, pp: 45-61. doi: 10.1006/ jfbi.2001.1596.
28
Kjellman, J. and Eloranta, A., 2002. Field estimations of temperature-dependent processes: case growth of young burbot. Hydrobiologia. Vol. 481, pp: 187-192.
29
Ligon, F.; Rich, A.; Rynearson, G.; Thornburgh, D. and Trush, W., 1999. Report of the Scientific Review Panel on California Forest Practice Rules and Salmonid Habitat: Prepared for the Resource Agency of California and the National Marine Fisheries Sacramento, Calif. 92 p appendices.
30
Luis, G.M., 2008. Age and growth of the tilapia, Oreochromis niloticus (Perciformes: Cichlidae) from a tropical shallow lake in Mexico.Biol.Trop. (Int.J.Trop. Biol. ISSN-0034-7744) Vol. 56, No. 2, pp: 875-884.
31
Mills, C.A. and Mann, R.H.K., 1983. The bullhead Cottus gobio, a versatile and successful fish. Report of the Freshwater Biological Association. Vol. 51, pp: 76-88.
32
Munro, J. and Pauly, D., 1983. A simple method for comparing the growth of fishes and invertebrates. Fishbyte. Vol. 1, No. 1, pp: 5-6.
33
Pauly, D. and Munro, J.L., 1984. Once more on the comparison of growth in fish and invertebrates. ICLARM Fishbyte. Vol. 1, pp: 21-22.
34
Pauly, D., 1980. On the interrelationships between natural mortality, growth parameters, and mean environmental temperature in 175 fish stocks. Journal Du Conseil International Pour L'Exploration De La Mer. Vol. 39, No. 2, pp: 175-192.
35
Ricker, W.E., 1979. Growth rates and models. In Fish Physiology, Vol. VIII (Hoar, W.S.; Randall, D.J. and Brett, J.R., eds). London: Academic Press. pp. 677-743.
36
Ricker, W.E., 1975. Computation and interpretation of biological statistics of fish populations. Department of the Environment, Fisheries, and Marine Service (Ottawa). 382 p.
37
Shcherbina, M.A. Kazlauskene, and O.P., 1971. Water temperature and digestibility of nutrient substances by carp. Hydrobiologia. Vol. 9, pp: 40-44.
38
Sparre, P. and Venema, S.C., 1998. Introduction to tropical fish stock assessment, FAO Fisheries technical paper. 450 p.
39
Sparre, P.; Ursin, E. and Venema, S.C., 1992. Introduction to tropical fish stock assessment. Part 1. Manual. FAO Fisheries Technical Paper, Rome, Italy. 333 P.
40
Stearns, S.C., 1992. The Evolution of Life Histories. Oxford: Oxford University Press.
41
Vinje, F.; Heino, M.; Dieckmann, U.; Godّ, O. and Mork, J., 2003. Spatial structure in length at age of cod in the Barents Sea. Journal of Fish Biology. Vol. 62, pp: 549-564.
42
Von Bertalanffy, L., 1938. A quantitative theory of organic growth. Human Biology. Vol. 10, No. 2, pp: 181-213.
43
Wootton, R.J., 1990. Ecology of Teleost Fishes. London: Chapman & Hall.
44
Yao, J.L.; Chen, Y.F.; Chen, F. and He, D.K., 2009. Age and growth of an endemic Tibetan fish, Schizothorax o’connori, in the Yarlung Tsangpo River. J. Freshwater Ecol. Vol. 24, pp:343-345.
45
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی عصاره جلبک قرمز جانیا (Jania adhaerens J.V. Lamouroux) به عنوان مکمل غذایی در ماهی کفال خاکستری (Mugil cephalus)
هدف از این تحقیق، ارزیابی استفاده از عصاره جلبک قرمز جانیا (Jania adhaerens) برای اولین بار به عنوان مکمل غذایی بر عملکرد رشد، تغذیه، ترکیب شیمیایی بدن و آنزیم های گوارشی ماهی کفال خاکستری (Mugil cephalus) می باشد. چهار رژیم غذایی به ترتیب حاوی 0، 5، 10 و 15 گرم عصاره جلبک جانیا بر کیلوگرم غذا تهیه شد. 120 قطعه ماهی کفال خاکستری با میانگین وزنی 2/01±14/95 (میانگین± خطای معیار) گرم در 4 گروه برطبق رژیم های غذایی مختلف به صورت تصادفی به ترتیب 0 (گروه شاهد)، 5 ، 10 و 15 گرم عصاره جانیا بر کیلوگرم غذا تقسیم بندی شدند. بین گروه های آزمایشی و گروه شاهد از نظر وزن نهایی، میزان غذای دریافتی، میزان افزایش وزن به دست آمده، راندمان مصرف پروتئین و راندمان مصرف چربی اختلاف معنی داری مشاهده شد (0/05>P). هم چنین بیش ترین میزان شاخص های فوق در گروه حاوی 10 گرم عصاره جانیا بر کیلوگرم غذا مشاهده شد. بیش ترین میزان پروتئین خام، رطوبت لاشه، فعالیت آنزیم های پروتئآز، آمیلاز و لیپاز و کم ترین میزان چربی در گروه حاوی 15 گرم جانیا بر کیلوگرم غذا مشاهده شد. هرچند از نظر فعالیت آنزیم لیپاز بین گروه 10 و 15 گرم جانیا بر کیلوگرم غذا اختلاف معنی داری مشاهده نشد (0/05<P). در کل، نتایج این تحقیق نشان داد که ماهیان کفال تغذیه شده با رژیم غذایی حاوی 10 و 15 گرم عصاره جانیا بر کیلوگرم غذا عملکرد رشد، تغذیه، ترکیب لاشه و فعالیت آنزیم های گوارشی بهتری را در مقایسه با تیمار شاهد نشان دادند و استفاده از 10 گرم عصاره جانیا بر کیلوگرم غذا در جیره غذایی ماهی کفال خاکستری توصیه می گردد.
http://www.aejournal.ir/article_94207_0fdb48c211d75266683415a3681942bf.pdf
2019-07-23
277
282
جلبک دریایی قرمز
ماهی کفال خاکستری
عملکرد رشد
فعالیت آنزیم های گوارشی
پریا
اکبری
paria.akbary@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
LEAD_AUTHOR
فرزانه
دباشی
2
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
AUTHOR
Akbary, P. and Shahraki, N., 2017. Effect of dietary supplementation of Padina astraulis (Hauck) extract on biochemical response and digestive enzyme activities of grey mullet, Mugil cephalus (Linnaeus). Iranian Journal of Fisheries Science, (Under published).
1
Akbary, P. and Shahraki, N., 2016. Effect of Padina atraulis extract on growth, feed, fatty acids profile and carcass composition in Mugil cephalus Linnaeus, 1758. Iranian Scientific FisheriesJournal. Vol. 25, No. 2,pp:161-171.
2
AOAC. 1989. Assosiation of Official Analytical Chemists (AOAC). Official Method of Analysis of the Assosiation of Official Analytical Chemists, 15th ed. Assosiation of Official Analytical Chemists, Arlington, VA, USA
3
Borquez, A.; Serrano, E.; Dantagnan, D.; Carrasco, J. and Hernandez, A., 2010. Feeding high inclusion of whole grain white lupin (Lupinus albus) to rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): effects on growth, nutrient digestibility, liver and intestine histology and muscle fatty acid composition. Aquaculture Research. Vol. 42, pp:1067-1078.
4
Chong, A.S.C.; Hashim, R. M.; Chow-Tang, L. and Ali, A.B., 2002. Partial characterization and activities of protease from the digestive tract of discus fish (Symphysodon aequifasciata). Aquaculture. Vol. 203, pp: 321-331.
5
Choi, Y.H.; Lee, B.J. and Nam, T.J., 2015. Effect of dietary inclusion of Pyropia yezoensis extract on biochemical and immune responses of olive flounder Paralichthys olivaceus. Aquaculture. Vol. 435, pp: 347-353.
6
Citarasu, T., 2010. Herbal biomedicines a new opportunity for aquaculture industry. Aquaculture International. Vol. 18, pp: 403-414 .
7
Das, K.M. and Tripathi, S.D., 1991. Studies on the digestive enzymes of grass carp, Ctenopharhyngodan idella. Aquaculture. Vol. 92, pp: 21-32.
8
Davies, S.J.; Brown, M.T. and Camilleri, M., 1997. Preliminary assessment of the seaweed, Porphyra purpurea, in artificial diets for thick lipped grey mullet Chelon labrosus. Aquaculture. Vol. 152, pp: 249-258.
9
Dequara, S.; Jauncey, K. and Agius, C., 2003. Enzyme activities and pH variations in the digestive tract of gilthead sea bream. Journal of Fish Biology. Vol. 62, pp:1033-1043.
10
Ebrahim Ebrahimi, I.; Tangestani, R.; Alizadeh Dvghyklayy, E. and Zare , P., 2013. Effect of different levels of garlic essential oil on growth, feed and carcass composition of beluga (Huso huso) Rearing young. Journal of Marine Science and Technology. Vol. 11, pp:1-12 (in persian).
11
El-Tawil, A., 2010. Effects of Green Seaweeds (Ulva sp.) as Feed Supplements in Red Tilapia (Oreochromis sp.) diet on growth performance, feed utilization and body composition. Journal of Arabian Aquaculture Society. Vol. 5, pp: 179-193.
12
Gawlicka, A.; Parrent, B.; Horn, M. H.; Ross, N.; Opstad, I. and Torrissen, O.J., 2000. Activity of digestive enzyme in yolk- sac larvae of Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus) indication of readiness for first feeding. Aquaculture. Vol. 184, pp: 304-314.
13
Geurden, I.; Cuvier, A.; Gondouin, E.; Olsen, R.E.; Ruohonen, K.; Kaushik, S. and Boujard, T., 2005. Rainbow trout can discriminate between feeds with different oil sources. Physiology and Behavior. Vol. 85, pp: 107-114.
14
Harikrishnan, R.; Balasundaram, C. and Heo, M.S., 2012. Effect of Inonotus obliquus enriched diet on hematology, immune response, and disease protection in kelp grouper, Epinephelus bruneus against Vibrio harveyi. Aquaculture. Vol. 344, pp: 48-53.
15
King, J., 1965. Practical clinical enymology.363 pp D´van Nostrand Company Ltd, New York.
16
Lovell, R.T., 2002. Diet and fish husbandry. In: Fish Nutrition (ed. by Halver, J.E.,), 3rd edn. Academic Press, San Diego, CA, USA. pp: 703-754.
17
Mustafa, M.G.; Wakamatsu, S.; Takeda, T.A.; Umino, T. and Nakagawa, H., 1995. Effects of algae meal as feed additive on growth, feed efficiency, and body composition in red sea bream. Fisheries Science. Vol. 61, pp: 25-28.
18
Natalia, Y.; Hashim, R.; Ali, A. and Chong, A., 2004. Characterization of digestive enzymes in acarnivorous ornamental fish, the Asian bony tongue Scleropages formosus (Osteoglossidae). Aquaculture. Vol. 233, pp: 305-320.
19
Porfaraj, V.; Karami, M.; Nezami, S.A.; Rafiee, G.R.; Khara, H. and Hamidoghli, A., 2013. Study of some biological features of Mullets in Iranian coasts of the Caspian Sea. Journal of Utilization and Cultivation of Aquatics. Vol. 2, pp: 97-110.
20
Soler-Vila, A.; Coughlan, S.; Guiry, M. and Kraan, S., 2009. The red alga Porphyra dioica as a fish-feed ingredient for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): effects on growth, feed efficiency, and carcass composition. Journal of Applied Phycology. Vol. 21, No. 5, pp: 617-624.
21
Taboada C.; Millan R. and Miguez I., 2013. Evaluation of the marine alga Ulva rigida as a food supplement: effect of intake on intestinal, hepatic, and renal enzyme activities in rats. Journal of Medicinal Food. Vol. 14, pp: 161-166.
22
Valente, L.P.; Araújo, M.; Batista, S.; Peixoto, M.; Sousa Pinto, I.; Brotas, V.; Cunha, L. and Rema, P., 2015. Carotenoid deposition, flesh quality and immunological response of Nile tilapia fed increasing levels of IMTA cultivated Ulva spp. Journal of applied phycology. Vol. 1, pp: 1-11.
23
Valente, L.; Gouveia, A.; Rema, P.; Matos, J. and Gomes, E., Pinto, I., 2006. Evaluation of three seaweeds Gracilaria bursa-pastoris, Ulva rigida and Gracilaria cornea as dietary ingredients in European sea bass (Dicentrarchus labrax) juveniles. Aquaculture. Vol. 252, No. 1, pp: 85-91.
24
Wahli, T.; Verlhac, V.; Griling, P.; Gabaudan, J. and Aebischer, C., 2003. Influence of dietary vitamin C on the wound healing process in rainbow trout (Oncorhyncus mykiss). Aquaculture. Vol. 225, pp: 371-386.
25
Wassef, E.A.; El Masry, M.H. and Mikhail, F.R., 2001. Growth enhancement and muscle structure of striped mullets, Mugil cephalus L., fingerlings by feeding algal meal-based diets. Aquaculture Research. Vol. 32, pp: 315-322.
26
Zheng, K.; Liang, M.; Yao, H.; Wang, J. and Chang, Q., 2012. Effect of dietaryfish protein hydrolysate on growth, feed utilization and IGF-I levels of Japaneseflounder (Paralichthys olivaceus). Aquaculture Nutrition. Vol. 18, pp: 297-303.
27
Stadtlander, T.; Khalil, W.K.B.; Focken, U. and Becker, K., 2013. Effects of low and medium levels of red alga nori (Porphyra yezoensisUeda) in the diets on growth, feed utilization and metabolism in intensively fed Nile tilapia, Oreochromis niliticus(L.). Aquaculture Nutrition. Vol. 19, pp: 64-73.
28
Shalaby, A.M.; Khattab, Y.M. and Abdel rahman, A.M., 2006. Effects of garlic (Allium sativum) and chloramphenicol on growth performance, physiological parameters and survival of Nile Tilapia (Oreochromis niloticus). Journal of Venomous Animimals and Toxins Including Tropical Diseases. Vol. 12, pp: 172-201.
29
ORIGINAL_ARTICLE
اثر رنگدانه سنتتیک و رنگدانه های طبیعی جلبک اسپیرولینا و فلفل دلمه ایی زرد بر رنگ پذیری، شاخص های رشد در ماهی سیچلاید الکتریکی زرد آبی (Labidochromis caeruleus)
این مطالعه به منظور ارزیابی اثرات استفاده از بتاکاروتن به عنوان رنگدانه سنتتیک و جلبک اسپیرولینا و فلفل دلمه ای زرد به عنوان رنگدانه ای طبیعی بر رنگ پذیر و عملکرد رشد ماهی سیچلاید الکتریکی زرد آبی انجام شد. تعداد 120 عدد ماهی سیچلاید زرد آبی با میانگین وزنی (0/05±2/51 گرم) در قالب 3 تیمار و یک گروه شاهد و هر کدام با سه تکرارتقسیم شدند.12عدد آکواریوم به ابعاد 70×40×30 سانتیمتر آماده و 10 قطعه ماهی به هر کدام اضافه شد. گروه شاهد با غذای فاقد افزودنی (غذای پایه) تغذیه گردید. تیمار 1 جیره های حاوی بتاکاروتن (40 میلی گرم در کیلوگرم غذا)، تیمار 2 جلبک اسپیرولینا و تیمار 3 فلفل دلمه ای زرد (هریک به مقدار 10 گرم در کیلوگرم غذا) بودند. بعد از تیماربندی به مدت 8 هفته ماهیان با جیره های آزمایشی مورد تغذیه قرارگرفتند. سپس شاخصهای رنگی شدن ازنظر معنی داری با روش One way ANOVA در نرم افزار19 Spss مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفتند. هم چنین برخی از شاخصهای رشد مانند SGR ،FCR ، BWI مورد بررسی قرار گرفتند . پس از پایان دوره پرورش از هر تیمار تعداد 9 عدد ماهی به صورت تصادفی انتخاب گردید و برای ارزیابی میزان تغییر رنگ ایجاد شده از سیستم رنگ سنجی L*a*b* با استفاده ازدستگاهChroma meter CR-40 استفاده شـد. در نتایج به دست آمده از نظر هر سه مؤلفه تفاوت معنی داری مشاهده نشد. به طورکلی می توان نتیجه گرفت که استفاده از بتاکاروتن، جلبک اسپیرولینا و فلفل دلمهایی در جیره ماهی سیچلاید الکتریکی زرد آبی تأثیر معنی دار بر روی شاخص های رنگ ظاهری نشده است (0/05<P) و هم چنین نتایج نشان داد که تفاوت معنی داری در شاخص های رشد بین تیمارهای تغذیه شده حاوی بتاکاروتن، جلبک اسپیرولینا و فلفل دلمهایی با تیمار شاهد وجود نداشت (0/05<P).
http://www.aejournal.ir/article_92569_1fd119dab43469947830fb4773fff853.pdf
2019-07-23
283
288
رنگ پذیری
رشد
بتاکاروتن
اسپیرولینا
فلفل دلمه ای زرد
ماهی ماکرو
شیرین
یلباسی
shirin.bh.1369@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
محمدرضا
ایمانپور
mrimanpoor53@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
بهاره
شعبان پور
b_shabanpour@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
عباسی عقدا، م.؛ وثوقی، ع. و متینفر، م.،1395. بررسی اثر پوست سبز گردو بر رشد ماهی اسکار (Astronotus ocellatus). مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. دوره 11، شماره 1، صفحات 11 تا 21.
1
غیاثوند، ز. و شاپوری، م.، 1387. تاثیر رنگدانه های طبیعی و مصنوعی و مقایسه اثر آن ها بر ماهی اسکار سفید. مجله بیولوژی دریا. دوره 1، شماره 1، صفحات 78 تا 85.
2
Awasthi, M.;Kashyap, A. and Serajuddin, M.,2014. Effect of Plant Meal as a Carotenoid Source on the Development of Pigmentation in Dwarf Gourami, Colisa lalia. Proceedings of the National Academy of Sciences, India Section B: Biological Sciences. Vol. 84, pp: 1031-1034.
3
Buyukcapar, H.M. and Yanar, M. 2007. Pigmentation of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) with carotenoids from marigold flower (Tagetes erecta) and red pepper (Capsicum annum). Turkish Journal of Veterinary and Animal. Vol. 31, pp: 7-12.
4
Boonyaratpalin, M. and Lovell,R.T.,1977. Diet preparation for aquarium fishes. Aquaculture. Vol. 12, pp: 53-62.
5
Boonyaratpalin, M.; Thongrod, S.; Supamattarya, K.; Britton, G. and Schlipalius, L.E., 2001. Effect of β-caroten source, Dunalied Salina and astaxanthin on pigmentation, growth, survival and health of Penaeus monodoon. Aquaculture Research. Vol. 32, pp: 182-190.
6
Boonyaratpalin, M. and Unprasert, N., 1989. Effect of pigments from different sources on colour changes and growth of red Oreocromis niloticus. Aquaculture. Vol. 79, pp: 375-380.
7
Booth, M.; Warner–Smith, R.; Allan, G. andGlencross, B., 2004. Effects of dietary astaxanthin source and light manipulation on the skin colour of Australian snapper Pagrus auratus. Aquaculture Research. Vol. 35, No. 5, pp: 458-464.
8
Chatzifotis, S.; Pavlidis, M.; Jimeno, C.; Vardanis, P. and Divanach, P., 2004. The effect of carotenoid sources on skin coloration of red Porgy (Pagrus pagrus). Aquaculture Europe Conference. pp: 70-78.
9
Clifford, T.; Howatson, G.; West, D.J. and Stevenson, E.J., 2015. The potential benefits of red beetroot supplementation in health and disease. Nutrients. Vol. 7, pp: 2801-2822.
10
Cui, B.; Liu, S.; Wang, Q. and Lin, X., 2012. Effect of β Carotene on immunity function & tumor growth in hepatocellular carcinoma rats. Molecules. Vol.17, pp: 8595-8603.
11
Diraman, H.; Koru, E. and Dibekioglu, H., 2009. Fatty acid profile of Spirulina platensis used as a food supplement. The Israeli J of Aquaculture Bamidgeh. Vol. 61, pp: 134-142.
12
FAO. 2014. Food and Agricultural Organization of United Nations (FAO), Rome, Updated 27 May 2014. Sales, J. and Janssens, G., 2003. Nutrient requirements of ornamental fish. Aquatic Living Resources. Vol. 16, pp: 533-540.
13
Fuji, R., 1969. Chromatophores and pigments. In: Hoar WS, Randall DJ (eds) Fish physiology. Reproduction and growth. Bio luminescence, pigments and poisons. Academic Press, New York. Vol. 111, pp: 301-353.
14
Gupta, S.K.; Jha, A.K.; Pal, A.K. and Venkateshwarlu, G., 2006. Use of natural carotenoids for pigmentation in fish. Natural Product Radiance. Vol. 6, pp: 46-49.
15
Jagadeesh, T.; Murthy, H.S.; Surendranath,S.; Panikkar, P.; Manjappa, N. and Mahesh, V., 2015. Effects of supplementation of marigold (tagetes erecta) oleoresin on growth, survival and pigmentation of rosy barb, puntius conchonius (hamilton). An Internal Quarterly Journal of Life Sciences. Vol. 10, No. 3, pp: 1431-1435.
16
Kalinowski, C.T.; Izquierdo, M.S.; Schuchardt, D. and Robaina, L.E., 2007. Dietary supplementation time with shrimp shell meal on red porgy skin colour and carotenoid concentration. Aquaculture. Viol. 272, No. 1, pp: 451-457.
17
Kop, A. and Durmaz, Y., 2008. The effect of synthetic and natural pigments on the colour of the cichlids (Cichlasoma severum). Aquaculture. Vol. 16, pp: 117-122.
18
Kurnia, A.; Satoh, S.; Haga, Y.; Kudo, H.; Nakada, M.; Matsumura, H.; Watanabe, Y. and Adachi, S., 2015. Muscle coloration of rainbow trout with astaxanthin sources from marine bacteria and syntheticastaxanthin. J Aquac Res Development. Vol. 6, No. 5.
19
Pham, M.A.; Byun, H.G.; Kim, K.D. and Lee, S.M., 2014. Effects of dietary carotenoid source and level on growth, skin pigmentation, antioxidant activity and chemical composition of juvenile olive flounder Paralichthys olivaceus. Aquaculture. Vol. 431, pp: 65-72.
20
Promya, J. and Chitmant, C., 2011. The effect of Spirulinaplatensis and Cladophora alga on the growth performance, meat quality and immunity simulating capacity of the African sharotooth catfish. International Journal of Agriculture & Biology. Vol. 13, pp: 77-82.
21
Talebi, M.; Khara, H.; Zoriehzahra, J.; Ghobadi, Sh.; Khodabandelo, A. and Mirrasooli, E., 2011. TheEffects of Lutein on Growth and Blood Factors of Rainbow Trout. International Conference on Chemical, Ecology and Environmental Sciences (ICCEES'2011), Dec. 17-18, 2011 in Pattaya, Thailand.
22
Talebi, M.; Khara, H.; Zoriehzahra, J.; Ghobadi, Sh.; Khodabandelo, A. and Mirrasooli, E., 2013. Study on Effect of Red Bell Pepper on Growth, Pigmentation and Blood Factors of Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss). World Journal of Zoology. Vol. 8, No. 1, pp: 17-23.
23
Tongsiri, S.; Mang-Amphan, K. and Peerapornpisal, Y., 2010. Effect of replacing fishmeal with spirulina on growth, carcass composition and pigment of the mekong giant catfish. Asian Journal of Agricultural Sciences. Vol. 2, pp: 106-110.
24
Torrissen, O.J., 1984. Pigmentation of salmonids; Effect of carotenoids in egg and start feeding diet on survival and growth rate. Aquaculture. Vol. 43, pp: 185-193.
25
Wang, Y.J.; Chien, Y.H. and Pan, C.H., 2006. Effects of dietary supplementation of carotenoids on survival, growth, pigmentation, and antioxidant capacity of Hyphessobrycon callistus. Aquaculture. Vol. 261, pp: 641-648.
26
Yamada, S.; Tanaka, Y.; Sameshima, M. and Ito, Y., 1990. Pigmentation of prawn Penaeus japonicas with carotenoids. Aquaculture. Vol. 87, pp: 323-330.
27
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه اثر جنسیت بر مقادیر چربی در خون، کبد و عضله ماهی شیربُت (Barbus grypus) پرورشی
ماهی شیربُت یک گونه بومی استان خوزستان و از مهمترین گونهها از دیدگاه صنعت و صیادی میباشد. اطلاعات کافی در مورد پارامترهای بیوشیمیایی و متابولیسم درباره این گونه در دسترس نیست. بنابرین در این تحقیق اثر بر جنسیت بر پارامترهای لیپید و لیپوپروتئین در سرُم، کبد و عضله شیربت پرورشی مورد مطالعه قرار گرفت. جهت اجرای این پروژه، 72 قطعه ماهی بالغ (36 نر و 36 ماده) از مجموعه پرورشی آزادگان منتقل گردیده و مورد آزمایش قرار گرفتند. خونگیری از ناحیه باله دمی صورت گرفت و پس از آسان کشی نمونه های کبد و عضله اخذ شد. نمونههای کبد و عضله به حجم 1 گرم، توسط حلال آلی چربیزدایی شده و به روش اسپکتوفتومتری مورد آنالیز قرار گرفت. نتایج اینگونه نشان میدهند که چربی کل، TG، TC، HDL-c، VLDL-c، LDL-c در سرم به ترتیب 488/174، 179/88، 252/958، 71/65، 36/343 و 128/041 میلی گرم در دسی لیتر تعیین گردید. مقدار چربی کل، TG، TC در کبد به ترتیب 73/407، 43/109 و 1/053 و در عضله به ترتیب 33/831، 19/417 و 0/703 میلی گرم درگرم بودند. اطلاعات به دست آمده در این مطالعه نشان داد که بین جنس نر و ماده در چربی کل، TG، TC و VLDL-c در سرم اختلاف معنیداری وجود دارد (0/05>P)، ولی در عضله مقدار چربی کل، TG، TC اختلاف معنیداری بین دو جنس نر و ماده مشاهده نشد (0/05<P).
http://www.aejournal.ir/article_92610_d69434aebe0e1aa48a9ea2c15a1f5e02.pdf
2019-07-23
289
294
سرم
کبد
عضله
تریگلیسرید کل
کلسترول کل
پویا
شریفی
sharifip@scu.ac.ir
1
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
مهرزاد
مصباح
m.mesbah@scu.ac.ir
2
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
علی
شهریاری
a.shahriari@scu.ac.ir
3
گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
ایزدخواستی،ز.؛1387. بررسی برخی از پارامترهای غیرالکترولیتی سرم خون ماهی شیربت پرورشی (Barbus grypus) خوزستان، پایان نامه دکترای عمومی از دانشگاه شهید چمران اهواز، شماره 259.
1
حمیدیان،غ.ر.؛1382. مطالعه ساختار بافت شناسی و هیستومتریک پوست نواحی مختلف ماهی بنی (Barbus sharpeyi). پایان نامه دکترای عمومی دامپزشکی دانشگاه شهید چمران، اهواز. شماره 591.
2
خواجه، غ.ح.؛ پیغان، ر. و مصباح، م.، 1383. بررسی برخی فاکتورهای خونی و بیوشیمیایی خون ماهی قزل آلای رنگین کمان. گزارش نهایی طرح تحقیقاتی، انتشارات دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، صفحات 26 تا 33.
3
صفری، ر.؛ ایمان پور، م.ر. و شعبانپور، ب.، 1386. بررسی ارتباط ترکیب شیمیایی بافت عضله با مراحل سیکل رسیدگی جنسی گناد در ماهی کپور دریای خزر(Cyprinus caprio). پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. شماره 77، صفحات 63 تا 69.
4
کاظمی، ر.ا. و بهمنی، م.، 1376. روشهای مطالعه غدد جنسی گونه های مختلف تاس ماهیان. انستیتو بینالمللی ماهیان خاویاری، گزارش نهایی طرح تحقیقاتی.
5
مجابی، غ.، 1379. بیوشیمی درمانگاهی دامپزشکی. چاپ اول، انتشارات نور بخش، تهران. صفحات 365 تا389.
6
Barnhart, R.A., 1969. Effects of certain variables on hematological characteristics of rainbow trout. Trans. Am. Fish Soc. Vol. 98, pp: 411-418.
7
Dietschy, J.M., 1998. Dietary fatty acids and the regulation of plasma low density lipoprotein cholesterol concentrations. J. Nut. Vol. 128, pp: 444S-448S.
8
Dorostghoal, M.; Peyghan, R.; Papan, F. and Khalili, L., 2009. Macroscopic and microscopic studies of annual ovarian maturation cycle of Shirbot Barbus grypus in Karon river of Iran. Shiraz University. Iranian J. Vet. Res. Vol. 27, pp: 172-179.
9
Encina, L. and Granado‐Lorencio, C., 1997. Seasonal variations in the physiological status and energy content of somatic and reproductive tissues of chub. J. Fish Biol. Vol. 50, pp: 511-522.
10
Frings, C.S.; Fendley, T.W.; Dunn, R.T. and Queen, C.A., 1972. Improved determination of total serum lipids by the sulfo-phospho-vanillin reaction. Clin. Chem. Vol. 18, pp: 673-674.
11
Gluth, G. and Hanke, W., 1985. A comparison of physiological changes in carp, Cyprinus carpio, induced by several pollutants at sublethal concentrations: The dependency on exposure time. Ecotoxicol Environ. Saf. Vol. 9, pp: 179-188.
12
Hara, A. and Radin, N.S., 1978. Lipid extraction of tissues with a low-toxicity solvent. Biochem. Vol. 90, pp: 420-426.
13
Hatami Nasari, F.; Kochanian, P.; Salati, A.P. and Pasha Zanoosi,H., 2014. Variation of some biochemical parameters in female yellowfin seabream, Acanthopagrus latus during reproductive cycle. Folia Zool. Vol. 63, pp: 238-244.
14
Karimi, S., Kochinian, P. and Salati, A.P., 2013. The effect of sexuality on some haematological parameters of the yellowfin seabream, Acanthopagrus latus in Persian Gulf. Ir. J. Vet. Res. Vol. 14, pp: 65-68.
15
Khal'ko, V. and Khal'ko, N., 2003. Comparative analysis of diurnal variations in lipid composition of juvenile roach Rutilus rutilus at unlimited food availability and starvation. J. Ichtyol. Vol. 43, pp: 471-482.
16
Komova, N., 2001. Dynamics of the Biochemical Composition of Tissues in Abramis brama (Cyprinidae) at Gonad Maturation. J. Ichthyol. Vol. 41, pp: 334-352.
17
Kozlova, T., 1998. Lipid class composition of benthic-pelagic fishes (Cottocomephorus Cottoidei) from Lake Baikal. Fish Physiol. Biochem. Vol. 19, pp: 211-216.
18
Marcus, R.B. and Million, R.R., 1990. The incidence of myelitis after irradiation of the cervical spinal cord. Int. J. Rad. Oncol. Biol. Phys. Vol. 19, pp: 3-8.
19
Nelson, J., 1994. Fishes of the World. 3rd ed., John Wiley and Sons, NewYork.
20
Osman, H.; Suriah, A. and Law, E., 2001. Fatty acid composition and cholesterol content of selected marine fish in Malaysian waters. Food Chem. Vol. 73, pp: 55-60.
21
Özogul, Y.; Özogul, F. and Alagoz, S., 2007. Fatty acid profiles and fat contents of commercially important seawater and freshwater fish species of Turkey: A comparative study. Food Chem. Vol. 103, pp: 217-223.
22
Rodríguez,C.;Acosta,C.;Badía,P.;Cejas,J.R.;Santamaría, F.J. and Lorenzo, A., 2004. Assessment of lipid and essential fatty acids requirements of black seabream (Spondyliosoma cantharus) by comparison of lipid composition in muscle and liver of wild and captive adult fish. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Biochemistry and Molecular Biology. Vol. 139, pp: 619-629.
23
Svetina, A.; Matašin, Ž.; Tofant, A.; Vucemilo, M. and Fijan, N., 2002. Haematology and some blood chemical parameters of young carp till the age of three years. Acta Veterinaria Hungarica. Vol. 50, pp: 459-467.
24
Svoboda, M.; Kouřil, J.; Hamáčková, J.; Kalab, P.; Savina, L.; Svobodova, Z. and Vykusova, B., 2001. Biochemical profile of blood plasma of tench during pre-and postspawning period. Acta Veterin Brno. Vol. 70, pp: 259-268.
25
Uysal, K.; Bülbül, M.; Dönmez, M. and Seçkin, A., 2008. Changes in some components of the muscle lipids of three freshwater fish species under natural extreme cold and temperate conditions. Fish physiology and biochemistry. Vol. 34, pp: 455-463.
26
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی رابطه طول- وزن و رشد در گربه ماهیان غالب خلیج فارس، محدوده استان هرمزگان
مطالعاتریخت شناسی جهت تخمین جمعیت گونه هایماهی ضروری وحائز اهمیت می باشد. این مطالعه، باهدف بررسی رابطه طول-وزن در چهار گونه ازگربه ماهیان شامل گربه ماهی بزرگ(Netuma thalassina (Rüppell, 1837،گربه ماهی خاکی Plicofollis dussumieri (Valenciennes, 1840، گربه ماهی پوزه گرد (Netuma bilineata (Valenciennes, 1840 و گربه ماهی زخمی (Plicofollis layardi (Günther, 1866 از سواحل خلیج فارس صورت گرفت. نمونه برداری از بهار 96 تا زمستان 96 به طور ماهانه از طریق تور ثابت ساحلی مشتا و تور ترال انجام گرفت. در کل 495 ماهی جمع آوری شد که شامل 212 گونه خاکی، 151 گونه ماهی بزرگ، 120 گونه زخمی و 12 گونه پوزه گرد بود. تفاوت معنی دار بین طول کل و وزن کل چهار گونه گربه ماهی مشاهده شد. مقایسه طول کل و وزن کل بین چهارفصل تفاوت معنی داری را نشان داد. فصل پاییز و تابستان به ترتیب بالاترین (42/80%) و پایین ترین (16%) درصد از گونه ها را شامل بودند. بالاترین میانگین طول کل در گربه ماهی خاکی در طول فصل تابستان مشاهده شد (میانگین 0/70±45/24) و کم ترین میانگین طولی مربوط به گونه زخمی در فصل پاییز بود (میانگین 3/83±15/08). بالاترین میانگین وزنی در گونه خاکی در فصل پاییز (80/86±1135/360) و کم ترین میانگین وزنی مربوط به گونه زخمی در طول فصل پاییز بود (20/39±40/3). در کل، روابط مورفومتریک متفاوت در چهار گونه حاکی از همبستگی قوی بین طول کل و وزن کل بود. در بین گربه ماهیان، گربه ماهی بزرگ (0/98=P>0/05 R2)، گربه ماهی خاکی (0/97=P>0/05 R2) و گربه ماهی زخمی (0/99=P>0/05 R2) رشد ایزومتریک را نشان دادند. در حالی که، رشد آلومتریک در گربه ماهی پوزه گرد (0/98=P<0/05 R2) مشاهده شد.
http://www.aejournal.ir/article_95263_46a9cfc616c7917a3ad160bee3420277.pdf
2019-07-23
295
304
رابطه طول و وزن
رشد
گربه ماهیان
خلیج فارس
هرمزگان
فریده
محسنی
fmohseni91@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی دریا، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
تورج
ولی نسب
t_valinassab@yahoo.com
2
مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
احسان
رمضانی فرد
ezamezanifard@gmail.com
3
گروه زیست شناسی دریا، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
سید محمدرضا
فاطمی
reza_fatemi@hotmail.com
4
گروه زیست شناسی دریا، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
محمدصدیق
مرتضوی
mseddiq1@yahoo.com
5
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
اندخش، م.؛ حسینی، س.؛ قربانی، ر.؛ رییسی، ه. و شعبانی، م.، 1394. ارزیابی رابطه طول و وزن، شاخص وضعیت گربه ماهی خال دار (Arius maculatus Thunberg, 1792) در خلیج فارس. بوم شناسی آبزیان. سال 4، شماره 4، صفحات 104تا 109.
1
چراغی شوی، م.؛ ولی نسب، ت. و حافظیه، م.،1392. شاخص های تغذیه ای گربه ماهی خاکی(Arius dussumieri)دریای عمان (سیستان و بلوچستان). مجله علمی شیلات ایران. سال 22، شماره 3، صفحات 31 تا 40.
2
دفتر برنامه ریزی و بودجه سازمان شیلات ایران. 1390. سالنامه آمار صید (1388-1379). سازمان شیلات ایران، ایران. 42 صفحه.
3
محمدخانی، ح. و عنایت غلام پور، ط.،1392. بررسی توزیع و زی توده جمعیت گربه ماهی بزرگ(Arius thalassinus) در فصول تابستان و پاییز به روش مساحت جاروبشده در دریای عمان (سواحل سیستان و بلوچستان). شیلات. سال 7، شماره 4، صفحات 55 تا 62.
4
ولی نسب، ت.، 1391. لیست ماهیان خلیج فارس، دریای عمان و دریای خزر. انتشارات موج سبز، تهران، ایران. 273 صفحه.
5
Aghajanpour, M.; Raeisi, H.; Moradinasab, A.; Daliri, M.; Parsa, M.; Bibak, M. and Nekuru, A., 2015. Length-weight relationships of six fishes from intertidal and coastal waters in the northern Persian Gulf. J. Appl. Ichthyol. Vol. 31, pp: 403-404.
6
AL-Hassan, J.M.; Clayton, D.; Thomson, M. and Criddle, R., 1988. Taxonomy and distribution of ariid catfishes from the Arabian Gulf. Journal of Natural History. Vol. 22, pp: 473-487.
7
Al-Zafiri1, B.; Magdy, M.; Mohamed Ali, R.A. and Rashed, M.A., 2018. DNA Barcoding of Common Commercial Sea Catfish (Genus: Plicofollis) from Kuwait. American Journal of Molecular Biology. Vol. 8, pp: 102-108.
8
Allen, K.R., 1966. A Method of Fitting Growth Curves of the von Bertalanffy Type to Observed Data. Journal of the Fisheries Research Board of Canada. Vol. 23, No. 2, pp: 163-179.
9
Arshad, A.; Jimmy, A.; Nurul Amin, S.M.; Japar Sidik, B. and Harah Z.M., 2008. Length–weight and length–length relationships of five fish species collected from seagrass beds of the Sungai Pulai estuary, Peninsular Malaysia. J. Appl. Ichthyol. Vol. 24, pp: 328-329.
10
Betancur, R.; Acero A.; Bermingham P.E. and Cooke, R., 2007. Systematics and biogeography of New World sea catfishes (Siluriformes: Ariidae) as inferred from mitochondrial, nuclear, and morphological evidence. Molecular Phylogenetics Evolution. Vol. 45, pp: 339-357.
11
Beverton, R.J.H. and Holt, S.J., 1957. On the dynamics of exploited fish populations. Fish. Invest. Minist. Agric. Fish. Food. G. B. (2 Sea Fish.). Vol. 19, 533 p.
12
Bleeker, P., 1862. Atlas ichthyologique des Indes Orientales Neerlandaises, publie sous les auspices du Gouvernement colonial neerlandais. Tome II. Siluroides, Chacoïdes et Heterobranchoïdes. De Breuk and Smits, Amsterdam. 112 p.
13
Cadima, E.L., 2003. Fish stock assessment manual. FAO Fisheries Technical Paper. Vol. 393, 161 p.
14
Carlander, K.D., 1969. Handbook of freshwater fishery biology, Vol. 1. The Iowa State University Press, Ames, IA. 752 p.
15
Cochin, I., 1987. Marine fish's information service. Central Marine Fisheries Research Institute. Vol. 73, pp: 13-19.
16
Das, N.G.; Majumder, A.A. and Sarwar, S.M.M., 1997. Length-weight relationship and condition factor of catfish Arius tenuispinis Day. Ind. J. Fish. Vol. 44, No. 1, pp: 81-85.
17
Doha, S. and Dewan, S., 1967. Studies on the biology of tilapia (Tilapia mossambica Peters). Length-weight relationship and condition factor. Pak. J. Sci. Vol. 19, pp: 23-28.
18
Farooq, N.; Omar, N.; Rashid, Sh. and Panhwar, S.K., 2017. Length-weight relationship of eleven species of marine catfishes from the northern Arabian Sea coast of Pakistan. Chinese Journal of Oceanology and Limnology. Vol. 35, pp: 1218-1220.
19
Froese, R., 1998. Length weight relationships for 18 less studied fish species. J. Appl. Ichthyol. Vol. 14, pp: 117-118.
20
Cheraghi Shevi, M.; Valinassab, T.; Hafezieh, M. and Taghavi, l., 2015. Morphological characteristics of lapillus and aging of Plicofollis dussumieri (Ruppell, 1837) from Oman Sea. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 14, No. 2, pp: 494-502.
21
Jayaram, K.C., 1984. FAO Species Identification Sheets: Ariidae. In FAO Species Identification Sheets for Fisheries Purposes: Western Indian Ocean. (W. Fischerand G. Bianchi, Eds) Rome: FAO Fisheries Dept. Vol. 1.
22
Kailola P.J., 2004. A phylogenetic exploration of the catfish family Ariidae. The Beagle, Records of the Museums and Art Galleries Northern Territories, Vol. 20, pp: 87-166.
23
King, M., 2007. Fisheries biology, assessment and management. 2nd edition. Black well scientific publications, Oxford. 382 p.
24
Marceniuk, A.P. and Menezes, N.A., 2007. Systematics of the family Ariidae (Ostariophysi, Siluriformes), with a redefinition of the genera. Zootaxa. Vol. 1416, pp: 1-126.
25
Marceniuk, A.P.; Menezes, N.A. and Britto, M.R., 2012. Phylogenetic analysis of the family Ariidae (Ostariophysi: Siluriformes), with a hypothesis on the monophyly and relationships of genera. Zool J Linnean Soc. Vol. 165, pp: 534-669.
26
Marceniuk, A.P.; Bogorodsky, S.V.; Mal, A.O. and Alpermann, T.J., 2017. Redescription of the blacktip sea catfish Plicofollis dussumieri (Valenciennes) (Siluriformes: Ariidae), with a new record from the Red Sea and notes on the diversity and distribution of Plicofollis spp. Mar Biodiv. Vol. 47, pp: 1239-1250.
27
Owfi, F., 2015. A review on systematic and taxonomic of the Persian Gulf in fish species, based on geographical distribution pattern and habitat diversity, using by GIS. PhD Thesis, Islamic Azad University, Science and Research Branch, Tehran. 180 p.
28
Pauly, D., 1983. Some simple methods for the 1983 assessment of tropical Fish stocks. FAO Fish Technical Paper. Vol. 234, 52 p.
29
Pauly, D. and Mines, A.N., 1992. Small-scale fisheries of San Miguel Bay, Philippines: biology and stock assessment. Published by the Institute of Fisheries Development and Research, College of Fisheries, University of the Philippines. 132 p.
30
Pauly, D.; S-Bartez, M.; Moreau, J. and Jarre Teichmann, A., 1992. A new model accounting for seasonal cessation of growth in fishes. Australian Journal of Marine and Freshwater Research. Vol. 43, pp: 1151-1156.
31
Provina, J.J. and Ralston, S., 1987. Tropical snapper and grouper biology and fisheries management. Ocean Resources. Marine Policy Ser. Bloulder Co. Colorado: westview Press. pp: 307-317.
32
Ricker, W.E., 1958. Hand book of computation for biological statistics of fish populations. Bull. Fish. Res. BAORD Can. pp: 119-382.
33
Sawant, B.T.; Chakraborty, S.K.; Jaiswar, A.K.; Bhagabati, S.K.; Kumar, T.; Sawant, P.B., 2013. Comparative length-weight relationship of two species of catfishes, Arius caelatus (Valenciennes, 1840) and Arius tenuispinis (Day, 1877) from Mumbai waters. Indian Journal of Geo-Marine Sciences. Vol. 42, pp: 266-269.
34
Tesch, F.W., 1971. Age and growth. In: Methods for assessment of fish production in fresh water. W. E. Ricker (Ed.), Blackwell Scientific Publication, Oxford, UK. pp: 98-103.
35
Vidthayanon, Ch., 1995. Species composition and Diversity of Fishes in the South China Sea, Area I: Gulf of Thailand and East Coast of Peninsular Malaysia. Chavalit. pp: 172-240.
36
Zar, J.H., 1999. Biostatistical Analysis. Prentice Hall, New Jersey. 663 p.
37
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی آرایه شناسی جنس Paraschistura (در جنوب ایران) با استفاده از توالی ژن میتوکندریایی (COI)
بررسی تنوع و ساختار ژنتیکی گونه های مختلف ماهیان از اساسی ترین شاخص های لازم برای حفظ و بازسازی ذخایر آن ها است. این مطالعه بر آن است تا با استفاده ازروش های مولکولی با استفاده از توالی های به دست آمده از ژن سیتوکرم اکسیداز COI به بررسی آرایه شناسی سگ ماهی جویباری جنس Paraschistura در جنوب ایران بپردازد. به این منظور نمونه بالغ از هر گونه که شامل:7عددگونه P. bamporensis، سه عدد گونه P. sargadensis، چهار عدد گونه P. hormozensis، و پنج عدد گونه Parascshistura sp.، از حوضه های جنوبی ایران جمع آوری گردید، DNA نمونه ها با استفاده از کیت ژنومی و پرایمر FCOI20ʹ استخراج گردیدو طیفرآیند PCR تکثیرو پس از الکتروفورز توالی یابی انجام گرفت. جهت بررسی روابط فیلوژنی توالی های ژن COI از نرم افزار MEGA6 استفاده گردید. نتایج این بررسی نشان داد که نمونه های جنس Paraschistura در چهار کلاد قرار گرفته اند. نمونه های P. bamporensis از حوضه های مختلف با فاصله تکاملی (0/128-0/005) به همراه P. sargadensis و Parascshistura sp از حوضه سرباز در یک کلاد قرار گرفته اند. نمونه های P. hormozensis با دارا بودن فاصله تکاملی (0/042)، در کلاد مجزایی قرار دارند. به همین ترتیب P. abdolii ،P. naumani و P. delvarii و با دارا بودن فواصل تکاملی (0/185-0/030) و نمونه Parascshistura sp. با فاصله تکاملی (0/206-0/042) در کلادهای مجزایی قرار گرفته اند. با توجه به فاصله حوضه ها از هم و بررسی خصوصیات مورفولوژی، نتایج مولکولی با نتایج مرفولوژیکی موجود مطابقت داشت. تجزیه و تحلیل درخت فیلوژنی در این مطالعه نشان می دهد ویژگی های ریخت شناسی مورفولوژیک به همراه شناسایی مولکولی برای تایید تشخیص گونهها ضروری می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_95279_dafb5b3bae7d14d9cbb240bc97d56694.pdf
2019-07-23
305
312
فیلوژنی
Paraschistura
آرایه شناسی
ساختار ژنتیکی
سگ ماهی
منا
مقدم
monamoghadam11@gmail.com
1
گروه محیط زیست دریایی، دانشکده محیط زیست، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
رحمانی
irandoe_rahmani@yahoo.com
2
گروه محیط زیست دریایی، دانشکده محیط زیست، کرج، ایران
AUTHOR
سهیل
ایگدری
soheil.eagderi@ut.ac.ir
3
گروه شیلات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی کرج، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
سمیرا
کیانی هرچگانی
samirakiyany@gmail.com
4
گروه محیط زیست دریایی، دانشکده محیط زیست، کرج، ایران
AUTHOR
Abdoli, A., 2000. The Inland Water Fishes of Iran. Iranian Museum of Nature and Wild life. Tehran.
1
Berg, L.S., 1949. Freshwater fishes of Iran and adjacent countries. Trady Zoologii Icheskogd Institute Academic. Nauk U.S.S.R.; (in Russia). Vol. 8, pp: 783-858.
2
Berg, L.S., 1948-1949. Freshwater fishes of the U.S.S.R. and adjacent countries. Part. 2. Fourth edition. Izdatelstvo Akademii Nauk SSSR, Moskva and Leningrad. pp: 470-925.
3
Bânârescu, P. and Nalbant, T.T., 1966. The 3rd Danish Expedition to Central Asia. Zoological results 34. Cobitidae (Pisces) from Afghanistan and Iran. Videnskabelige Meddelelser fra Dansk Naturhistorisk Forening i Kobenhavn. Vol. 129, pp: 149-186.
4
Bănărescu, P.M. and Nalbant, T.T., 1998. Cobitis elongata Heckel and Kner, 1858 (Pisces: Ostariophysi: Cobitidae): distribution, relationships, geographical variation and protection status. Revue.
5
Coad, B.W., 2014. Freshwater Fishes of Iran. Available from: www.briancoad.com. Retrieved 9/10/2014.
6
Diz, P.A. and Presa, P., 2009. The genetic diversity pattern of Mytilus alloprovincialis in GalicianRías (NW Iberian estuaries). Aquaculture. Vol. 287, pp: 278-285.
7
Freyhof, J.; Sayyadzadeh, G.; Esmaeili, H.R. and Geiger, M., 2015. Review of the genus Paraschistura from Iran with description of six new species (Teleostei: Nemacheilidae). Ichthyological Exploration of Freshwaters. Vol. 26, No. 1, pp: 1-48.
8
HashemzadehSegherloo,L.;Bernatchez,L.; Golzarianpour, K.; Abdoli, A.; Primmer, C.R. and Bakhtiary, M., 2012. Genetic differentiation between two sympatric morphs of the blind Iran cave barb Iranocypris typhlops. J of Fish Biology. Vol. 81, No. 5, pp: 1747-1753.
9
Hansen, M.M.; Nielsoen, E.E.; Bekkevold, D. and Mensberg, K.L.D., 2001. Admixture analysis and stocking impact assessment in Brown trout (Salmo trutta) estimated with incomplete baseline data. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic sciences. Vol. 58, No. 18, pp: 18-27.
10
Hebert, P.D.N.; Cywinska, A.; Ball, S.L. and deWaard, J.R., 2002. Biological identifications through DNA barcodes. The Royal Society.
11
Hebert, P.D.N.; Cywinska, A.; Ball, S.L. and deWaard, J.R., 2003. Biologicalidentifications through DNA barcodes. Proceedings of the Royal Society. Vol. 270, pp: 313-322.
12
Kimura, M., 1980. A simple method of estimating evolutionary rate of base substitutions throuth comparative studies of nucleotide sequences. Journal of molecular Evolution. Vol. 16, pp: 111-120.
13
Kottelat, M., 2012. Conspectus Cobitidum*: An Inventory of the Loaches of the World (Teleostei: Cypriniformes: Cobitoidei). The Raffles Bulletin of Zoology, Supplement. Vol. 26, pp: 1-199.
14
Mousavi-Sabet, H. and Eagderi, S., 2015. Paraschistura delvarii spec. nov. a new species of stone loach from the Persian Gulf basin, southern Iran (Teleostei: Nemacheilidae). Published online at www.senckenberg.de /vertebrate zoology on 13.xi.2015. Vol. 65, No. 3, pp: 297-303.
15
Mousavi-Sabet, H.; Vatandoust, S.; Khataminejad, S.; Eagderi, S.; Abbasi, K.; Nasri, M.; Jouladeh, A. and Vasil’eva, E.D., 2015. Alburnus amirkabiri (Teleostei), a New Species of Shemaya from the Namak Lake Basin, Iran. Journal of Ichthyology. Vol. 55, No. 1, pp: 40-52.
16
Nalbant, T.T. and Bianco, P.G., 1998. The loaches of Iran and adjacent regions with description of six new species (Cobitoidea). Italian Journal of Zoology. Vol. 65, pp: 109-123.
17
Nei, M., 1972. Genetic distance between populations. ASN. Vol. 106, No. 949, pp: 283-292.
18
Pinera, J.A.; Blanco, G.; Vázquez, E. and Sánchez, J.A., 2007. Genetic diversity of black spot seabream (Pagellus bogaraveo) populations Spanish Coasts: a preliminary study. Marin Biology. Vol. 151, pp: 2153-2158.
19
Prokofiev, A.M., 2009. Problems of the classification and phylogeny of Nemacheilin loaches of the group lacking the preethmoid I (Cypriniformes: Balitoridae: Nemacheilinae). Journal of Ichthyology. Vol. 49, pp: 874-898.
20
Qian, X.; Fei, C.; Shin, P.K.S.; Cheung, S.G.; Yan, C. and Caihuan, K., 2011. AFLP analysis of genetic variation among three natural population of horseshoe crab Tachypleus tridentatus along Chinese coast. Chinese journal of Oceanology and limnology. Vol. 29, pp: 284-289.
21
Regan, C.T., 1911. A synopsis of the marsipobranchs of the order Hyperoartii. Ann. Mag. Nat. Hist. Vol. 7, No. 8, pp: 193-204.
22
Tamura, K.; Dudley, J.; Nei, M. and Kumar, S., 2007. MEGA4: Molecular Evolutionary Genetics Analysis (MEGA) software version 4.0. Molecular Evolution. Vol. 24, pp: 1596-1599.
23
Vatandoust, S. and Eagderi, S., 2015. Paraschistura ilamensis, a new species of loach from the Tigris River drainage (Teleostei: Nemacheilidae). International Journal of Aquatic Biology. Vol. 3, No. 3, pp: 177-182.
24
Webb, K.E.; Barnes, D.K.A.; Clark, M.S. and Bowden, D.A., 2006. DNA barcoding: A molecular tool to identify Antarctic marine larvae. Deep-Sea Research. Vol. 53, pp: 1053-1060.
25
Zhang, D.X. and Hewitt, G.M, 2003. Nuclear DNA analyses in genetic studies of populations: practice, problems and prospects. Molecular Ecology.Vol. 12, pp: 563-584.
26
Zhao, Y.; Li, Q.; Kong, L.; Bao, Z. and Wang, R., 2007. Genetic diversity and divergence among clam Cyclina sinensis populations assessed using amplified fragment length polymorphism. Fisheries Science. Vol. 73, pp: 1338-1343.
27
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر غلظت های تحت کشنده دیازینون بر بیان ژن ویتلوژنین در جنس ماده ماهی گورخری (Danio rerio)
در این تحقیق تأثیر دوزهای مختلف سم دیازینون بر بیان ژن یتلوژنین (Vtg) درجنس ماده ماهی گورخری (Danio rerio) بررسی شد. تعداد 600 قطعه بچه ماهی گورخری با میانگین وزنی 0/01±0/15 گرم در 4 تیمار و 3 تکرار به مدت یک ماه تحت تاثیر سه دوز سم 0/8، 1/6 و 3/2 میلی گرم بر لیتر و تیمار شاهد قرار گرفتند. در انتهای دوره جهت مطالعات ژنتیکی از کبد نمونه برداری و استخراج RNA انجام شد. برای سنتز cDNA از کیت Superscript RTase استفاده شد و cDNA حاصله با استفاده از پرایمرهای ژنهای مذکور و ژن بتا اکتین به عنوان ژن رفرنس در Real Time PCR استفاده شد. ارزیابی بیان ژن ویتلوژنین کاهش بیان را در گروه های تیمار شده با سم دیازینون نسبت به گروه شاهد نشان داد. در گروه های تیمار شده با سم دیازینون (0/8، 1/6 و 3/2 میلی گرم بر لیتر) میزان بیان ژن ویتلوژنین به ترتیب 0/9، 0/69 و 0/39 برابر گروه شاهد بود که الگوی کاهشی وابسته به دوزی را نشان می دهد (0/05>P). نتایج مطالعه حاضر نشان می دهد که سم دیازینون می تواند اثر منفی بر رشد و تکامل سلول های جنسی در جنس ماده ماهی زبرا داشته باشد.
http://www.aejournal.ir/article_95297_516ac3c0c6de7c791853f84a7bdff6f6.pdf
2019-07-23
313
318
ویتلوژنین
دیازینون
بیان ژن
ماهی گورخری
معصومه
درویشی مجره
darvishi@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
رقیه
صفری
fisheriessafari@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
علی
شعبانی
ali_shabany@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
حسین
حسینی فر
hoseinifari@gau.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
جمشیدی، ش.؛ کلباسی، م.ر.؛ صادقی زاده، م. و یزدانی ساداتی، م.ع.، ۱۳۹۲. تاثیر نونیل فنل بر تغییرات بیان ژن های ویتلوژنین و زوناپلوسیدا ۳.۱ در بافت های کبد، طحال، آبشش و عضله تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus). علوم و فنون شیلات. دوره ۲، شماره ۲، صفحات 1 تا 10.
1
Ankley, G.T.; Miller, D.H.; Jensen, K.M.; Villeneuve, D.L. and Martinovic, D., 2008. Relationship of plasma sex steroid concentrations in female fathead minnows to reproductive success and population status. Aquatic toxicology. Vol. 88, No. 1, pp: 69-74.
2
Arnold, H.: Pluta H.J. and Braunbeck, T., 1996. Sublethal Effects of Prolonged Exposure to Disulfoton in Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss): Cytological Alterations in the Liver by a Potent Acetylcholine Esterase Inhibitor. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 34, No. 1, pp: 43-55.
3
Bowman, C.J.; Kroll, K.J.; Gross, T.G. and Denslow, N.D., 2002. Estradiol-induced geneexpression in largemouth bass (Micropterus salmoides). Mol. Cell. Endocrinol. Vol. 196, pp: 1-2.
4
Chang, J.; Liu, S.; Zhou, S.; Wang, M. and Zhu, G., 2013. Effects of butachlor on reproduction and hormone levels in adult zebrafish (Danio rerio). Experimental and toxicologic pathology. Vol. 65, No. 1, pp: 1-2.
5
Chen, M.; Zhang, J.; Pang, S.; Wang, C.; Wang, L.; Sun, Y. and Liang, Y., 2018. Evaluating estrogenic and anti-estrogenic effect of endocrine disrupting chemicals (EDCs) by zebrafish (Danio rerio) embryo-based vitellogenin 1 (vtg1) mRNA expression. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology. 204 p.
6
Chen, Y.Y. and Chan, K.M., 2016. Regulation of vitellogenin (vtg1) and estrogen receptor (er) gene expression in zebrafish (Danio rerio) following the administration of Cd2+ & 2, 3, 7, 8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin (TCDD). Chemosphere. 147 p.
7
Davis, L.K.; Pierce, A.L.; Hiramatsu, N.; Sullivan, C.V.; Hirano, T. and Grau, E.G., 2008. Gender-specific expression of multiple estrogen receptors, growth hormonereceptors, insulin-like growth factors and vitellogenins, and effects of 17 beta-estradiol in the male tilapia (Oreochromis mossambicus). General and comparative endocrinology. Vol. 156, No. 3, pp: 544-551.
8
Devlin, R.H. and Nagahama, Y., 2002. Sex determination and sex differentiation in fish: an overview of genetic, physiological, and environmental influences. Aquaculture. Vol. 208, pp: 3-4.
9
Dong, M.; Zhu, L.; Shao, B.; Zhu, S.; Wang, J.; Xie, H. and Wang, F., 2013. The effects of endosulfan on cytochrome P450 enzymes and glutathione S-transferases in zebrafish (Danio rerio) livers. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 92, pp: 1-9.
10
Henry, T.B.; McPherson, J.T.; Rogers, E.D.; Heah, T.P.; Hawkins, S.A.; Layton, A.C. and Sayler, G.S., 2009. Changes in the relative expression pattern of multiple vitellogenin genes in adult male and larval zebrafish exposed to exogenous estrogens. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology. Vol. 154, No. 1, pp: 119-126.
11
Hilscherova, K.; Jones, P.D.; Gracia, T.; Newsted, J.L.; Zhang, X.; Sanderson, J.T.; Yu, R.M.; Wu, R.S. and Giesy, J.P., 2004. Assessment of the effects of chemicals on the expression of ten steroidogenic genes in the H295R cell line using real-time PCR. Toxicological Sciences. Vol. 81, No. 1, pp: 78-89.
12
Hong, Y.; Yu, B.; Sherman, M.; Yuan, Y.C.; Zhou, D. and Chen, S., 2007. Molecular Basis for the Aromatization Reaction and Exemestane-Mediated Irreversible Inhibition of Human Aromatase. Molecular Endocrinology.Vol. 21, No. 2. pp: 401-414.
13
Hou, J.; Li, L.; Wu, N.; Su, Y.; Lin, W.; Li, G. and Gu, Z., 2015. Reproduction impairment and endocrine disruption in female zebrafish after long-term exposure to MC-LR: a life cycle assessment. Environmental Pollution. 208 p.
14
Husoy, A.M.; Myers, M.S. and Goksoyr, A., 1996. Cellular localization of cytochrome P450 (CYPlA) induction and histology in Atlantic cod (Gadus morhua L) and European flounder (Platichthys flesus) after environmental exposure to contaminants by caging in Sarrfiorden, Norway. Aquatic Toxicology. Vol. 36, No. 53, pp: 111-127.
15
Kobayashi, K.; Tamotsu, S.; Yasuda, K. and Oishi, T., 2005. Vitellogenin immune histochemistry in the exposed to 17b-estradiol & p-nonyl phenol liver the testis of the medaka Oryzias latipes. Zool. Sci. Vol. 22, No. 4, pp: 453-461.
16
Korkmaz, C. and Dönmez, A.E., 2017. Effects of Diazinon on 17β-estradiol, Plasma Vitellogenin and Liver and Gonad Tissues of Common Carp (Cyprinus carpio). Turkish J of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 17, No. 3, pp: 629-640.
17
Kuivila, K.M. and Foe, C.G., 1995. Concentrations, transport and biological effects of dormant spray pesticides in the San Francisco Estuary California. Environmental Toxicology and Chemistry. Vol. 14, No. 7, pp: 1141-1150.
18
Kwon, B.; Ha, N.; Jung, J.; Kim, P.G.; Kho, Y.; Choi, K. and Ji, K., 2016. Effects of Barium Chloride Exposure on Hormones and Genes of the Hypothalamic–Pituitary–Gonad Axis & Reproduction of Zebrafish. Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 96, No. 3. pp: 341-346.
19
Lange, I.G.; Hartel, A. and Meyer, H.H., 2003. Evolution of oestrogen functions in verte-brates. The Journal of steroid biochemistry and molecular biology. Vol. 83, pp: 1-5.
20
Lee, J.; Park, N.Y.; Kho, Y. and Ji, K., 2018. Effects of 4 Hydroxyphenyl 4-Isoprooxyphenylsulfone (BPSIP) Exposure on reproduction and endocrine system of Zebrafish. Environ science & technology. Vol. 52, No. 3, pp: 1506-1513.
21
Liley, N.R. and Stacey, N.E., 1983. Hormones, pheromones, and reproductive behavior in fish. Fish Physiology. 9 p.
22
Livak, K.J. and Schmittgen, T.D., 2001. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the method. Methods. Vol. 25, No. 4, pp: 402-408.
23
Marin, M.G. and Matozzo, V., 2004. Vitellogenin induction as a biomarkerof exposure to estrogenic compounds in aquatic environments. Marine Pollution Bulletin. Vol. 48, No. 9, pp: 835-539.
24
Mills, L. and Chichester, C., 2005. Review of evidence: are endocrine-disrupting chemicals in the aquatic environment impacting fish populations? Science of the Total Environment. Vol. 343, pp: 1-3.
25
Park, C.B.; Aoki, J.; Lee, J.S.; Nagae, M.; Lee, Y.D.; Sakakura, Y.; Hagiwara, A. and Soyano, K., 2010. The effects of 17β-estradiol on various reproductive parameters in the hermaphrodite fish Kryptolebias marmoratus. Aquatic toxicology. Vol. 96, No. 4, pp: 273-279.
26
Pereira, R.; Pereira, M.L.; Ribeiro, R. and Goncalve, F., 2006. Tissue and hair residues and histopathology in wild rats (Rattus rattus) and Algerian mice (Mus spretus) from and abandoned mine area (Southeast Portugal). Environmental Pollution. Vol. 139, No. 3, pp: 561-575.
27
Schelenk, D., 2006. Mechanisms of sterioselective sulfoxidin and toxicity of organophosphate, fenthion, in three species. Marine Environment Research. 62 p.
28
Sofikitis, N.; Giotitsas, N.; Tsounapi, P.; Baltogiannis, D.; Giannakis, D. andPardalidis,N.,2008. Hormonal regulation of spermatogenesis and spermiogenesis. The J of steroid biochemistry and molecular biology. Vol. 109, pp: 3-5.
29
Solé, M.; Raldua, D.; Piferrer, F.; Barceló, D. and Porte, C., 2003. Long-term exposure effects in vitellogenin, sex hormones, and biotransformation enzymes in female carp in relation to a sewage treatment works. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 56, No. 3, pp: 373-380.
30
Soto, A. M., Sonnenschein, C., Chung, K. L., Fernandez, M. F., Olea, N., Serrao, F. O. 1995. The E- SREEN assay as a tool to identifyestrogens: an update on estrogenic environmental pollutants. Environmental Health Persp. Vol. 103, No. 7, pp: 113-122.
31
Thomas, P.; Tubbs, C.; Berg, H. and Dressing, G., 2007. Sex steroid hormone receptors in fish ovaries. The Fish Oocyte. Springer Netherlands.
32
Uchida, D.; Yamashita, M.; Kitano, T. and Iguchi, T., 2004. An aromatase inhibitor or high water temperature induce oocyte apoptosis and depletion of P450 aromatase activity in the gonads of genetic female zebrafish during sex reversal. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology. Vol. 137, No. 1, pp: 11-20.
33
Van Der Geest, H.G.; Stuijfzand, S.C.; Krak, M.H.S. and Admiral, W., 1997. Impact of diazinon calamity in 1996 on the aquatic macroinvertebrates in the river Mesue. The Netherlands J of Aquatic Ecol. Vol. 30, No. 4, pp: 327-330.
34
Yu, L.; Liu, C.; Chen, Q. and Zhou, B., 2014. Endocrine disruption and reproduction impairment in zebrafish after long‐term exposure to DE‐71. Environmental toxicology and chemistry. Vol. 33, No. 6, pp: 1354-1362.
35
Yu, M.; Zhang, X.; Guo, L.; Tian, H.; Wang, W. and Ru, S., 2016. Anti estrogenic effect of semicarbazide in female zebrafish and its potential mechanisms. Aquatic Toxicology. 170 p.
36
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی پاسخ های فیزیولوژیک ماهی سفید (Rutilus frisii) به استرس ناشی از ابزار صید گوشگیر
برای بسیاری از گونه های دریای خزر اطلاعات بسیار اندکی در مورد پاسخ استرس به ابزار و آلات صید و صیادی وجود دارد. در این تحقیق پاسخ های فیزیولوژیک ماهیان سفید دریای خزر پس از تنش و استرس حاد وارده توسط ابزار صید گوشگیر مورد ارزیابی قرار گرفت. تور گوشگیر ثابت از ساحل در عمق 0/5 تا 5 متر در دریا مستقر گردید. نمونه های خونی برای ارزیابی پاسخ های فیزیولوژیک در فواصل زمانی صفر، 1، 3، 6، 12 و 18 ساعت پس از درگیری ماهیان با تور گوشگیر جمع آوری گردید. نمونه برداری در دو دمای متفاوت (دمای حدود 10 و 15 درجه سانتی گراد) انجام گرفت. سطوح کورتیزول، گلوکز پلاسما و پروتئین شوک حرارتی (HSP70) مورد بررسی قرار گرفت. نتایج پارامترهای مذکور نشان داد بین اثر استرس با دمای آب رابطه مستقیم وجود داشت، این نتیجه نشان داد که مقادیر شاخص های خونی در دمای بالاتر به نسبت بیشتر از دمای پایین تر بود. مقادیر کورتیزول در هر دو دما اختلاف معنی داری بین نمونه های خونی در فواصل زمانی را نشان داد (0/05≥P). سطوح کورتیزول افزایش 100 درصدی را به خود اختصاص داده بودند. مقادیر گلوکز پلاسما و پروتئین شوک حرارتی (HSP70) در هر دو دما اختلاف معنی داری بین نمونه های خونی در فواصل زمانی را نشان نداد (0/05≤P). در دوره سنجش، مقادیر گلوکز پلاسما و پروتئین شوک حرارتی (HSP70) روند افزایشی داشت که نشان دهنده تاثیر زمان استرس بر روی این پارامترها بود. ماهیان درگیر با تور گوشگیر پس از 18 ساعت همگی تلف شدند. شروع این تلفات حدوداً شش ساعت پس از درگیری بود. این مطالعه نشان داد که استرس حاد ناشی از تور گوشگیر بسیار کشنده است و ماهی حتی قادر به تحمل استرس و بقاء را به مدت زمان 18 ساعت نیز ندارد.
http://www.aejournal.ir/article_95376_ddb4681b477551ef496ebd28be722a3f.pdf
2019-07-23
319
328
کورتیزول
گلوکز
پروتئین شوک حرارتی
تور گوشگیر
ماهی سفید (Rutilus frisii)
حجت
احمدی فگجور
hahmadif@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
احسان
کامرانی
eza47@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
علی اصغر
خانی پور
aakhanipour@yahoo.com
3
پژوهشکده آبزیپروری آب های داخلی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندر انزلی، ایران
AUTHOR
آرش
اکبرزاده
akbarzadeh@ut.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
احمد
همایی
a.homaei@gmail.com
5
گروه بیوشیمی، دانشکده علوم، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
خانی پور، ع.ا. و ولی پور، ر.، 1388. ماهی سفید جواهر دریای خزر. انتشارات موسسه تحقیقات شیلات تهران. 84 صفحه.
1
عبدالملکی، ش. و غنی نژاد، د.، 1386. ارزیابی ذخایر ماهی سفید در سواحل ایرانی دریای خزردر سال 83-1382. مجله علمی شیلات ایران. شماره 1، صفحات 103 تا 114.
2
دریانبرد، غ.؛ عبدالملکی، ش. و بندانی، غ.، 1388. ارزیابی ذخایر ماهیان استخوانی در سواحل ایرانی دریای خزر (1384-86). موسسه تحقیقات شیلات ایران. 158صفحه.
3
Arends, R.J.; Mancera, J.M.; Mun˜oz, J.L. and Wendelaar Bonga, S.E., 1999. The stress response of the gilthead sea bream (Sparus aurata L.) to air exposure and confinement. J of Endocrinology. Vol. 163, pp: 149- 157.
4
Arlinghaus, R.; Cooke, S.J.; Lyman, J.; Policansky, D.; Schwab, A.; Suski, C.; Sutton, S.G. and Thorstad, E.B., 2007. Understanding the complexity of catch-and release in recreational fishing: an integrative synthesis of global knowledge from historical, ethical, social, and biological perspectives. Rev. Fish. Sci. Vol. 15, pp: 75-167.
5
Barton, B.; Bollig, H.; Hauskins, B.L. and Jansen, C.R; 2000. Juvenile pallid (Scaphirhynchus albus) and hybrid pallid_shovelnose (S. Albus platorynchus) sturgeons exhibit low physiological responses to acute handling and severe confinement. Comparative Biochemistry and Physiology. Part A Vol. 126, pp: 125-134.
6
Barton, B.A., 2002. Stress in fishes: a diversity of responses with particular reference to changes in circulating corticosteriods. Integrative and omparative Biology. Vol. 42, pp: 517-525.
7
Basu, N.; Todgham, A.E.; Ackerman, P.A.; Bibeau, M.R.; Nakano, K.; Schulte, P.M. and Iwama, G.K., 2002. Heat shock protein genes and their functional significance in fish. Gene. Vol. 295, No. 2, pp: 173-183.
8
Barton, B.A.; Ribas, L.; Acerete, L. and Tort, L., 2005. Effects of chronic confinement on physiological response of juvenile gilthead sea bream, Sparus aurata, to acute handling. Aquaculture Research. Vol. 36, pp: 172-179.
9
Bauer, M.; Greenwod, S.J.; Clark., K.F.; Jackman, P. Fairchild, W., 2013. Analysis of gene expression in Homarus americanus larvae exposed to sublethal concentration of endosulfan during metamorphosis. Comparative Biochemistry and physiology. Vol. 8, pp: 300-308.
10
Braley, H. and Andersson, T.A., 1992. Changes in blood metabolite concentrations in response to repeated capture, anesthesia and blood sampling in the Golden perch, Macquaria ambigua. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 103, pp: 445-450.
11
Brooks, E.J.; Mandelman, J.W.; Slowman, K.A.; Liss, S.; Danylchuk, A.J.; Cooke, S.J.; Skomal, G.B.; Philipp, D.P.; Sims, D.W. and Suski, C.D., 2012. The physiological response of the Caribbean reef shark (Carcharhinus perezi) to longline capture. Comp Biochem Physiol. Vol. 162, pp: 94-100.
12
Carlson, J.K. and Parsons, G.R., 2003. Respiratory and hematological responses of the bonnethead shark, Sphyrna tiburo, to acute changes in dissolved oxygen. Journal of experimental marine biology & ecology. Vol. 294, pp: 15-26.
13
Carragher, J.F. and Rees, C.M., 1994. Primary and secondary stress responses in golden perch, Macquaria ambigua. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 107, pp: 49-56.
14
Cech, J.J.; Bartholow, S.D.; Young, P.S. and Hopkins, T.E., 1996. Striped bass exercise and handling stress in freshwater: physiological responses to recovery environment. Transactions of the American Fisheries Society. Vol. 125, pp: 308-320.
15
Chen,G.A.;Wooster,G.A.andBowser,P.R., 2004. Comparative blood chemistry and histopathology of tilapia infected with Vibrio vulnificus or Streptococcus iniae or exposed to carbon tetrachloride, gentamicin or copper sulfate. Aquaculture. Vol. 239, pp: 421-443.
16
Chopin, F.S; Arimoto, T. and Inoue, Y., 1996. A comparison of the stress response and mortality of sea bream Pagrus major captured by hook and line and trammel net. Fisheries Research. Vol. 28, pp: 277-289.
17
Cliff, G. and Thurman, G.D., 1984. Pathological and physiological effects of stress during capture and transport in the juvenile dusky shark, Carcharhinus obscurus. Comparative biochemistry & physiology. Vol. 78, pp: 167-173.
18
Cooke, S.J. and Suski, C.D., 2005. Do we need species-specific guidelines for catch-andrelease recreational angling to effectively conserve diverse fishery resources? Biodivers. Conserv. Vol. 14, pp: 1195-1209.
19
Costas, B.; Conceição, L.E.C.; Aragão, C.; Martos, J.A.; Ruiz-Jarabo, I.; Mancera, J.M. and Afonso, A., 2011. Physiological responses of Senegalese sole (Solea senegalensis Kaup, 1858) after stress challenge: Effects on non-specific immune parameters, plasma free amino acids and energy metabolism. Aquaculture. pp: 68-76.
20
Currie, S. and Tufts, B., 1997. Synthesis of stress protein 70 (Hsp70) in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) red blood cells. J. Exp. Biol. Vol. 200, pp: 607-614.
21
Currie, S.; Moyes, C. and Tufts, B., 2000. The effects of heat shock and acclimating temperature on hsp70 and hsp30 mRNA expression in rainbow trout: in vivo and in vitro comparisons. J. Fish Biol. Vol. 56, pp: 398-408.
22
Dapp, D.R.; Walker, T.I.; Huveneers, C. and Reina, R.D., 2016. Respiratory mode and gear type are important determinants of elasmobranch immediate and post-release mortality. Fish and Fisheries. Vol. 17, pp: 507-524.
23
De Lestang, S.; Caputi, N.; Feng, M.; Denham, A.; Penn, J.; Slawinski, D.; Pearce, A. and How, J., 2014. What caused seven consecutive years of low puerulus settlement in the western rock lobster fishery of Western Australia? ICES J. Mar. Sci. doi:10.1093/icesjms/fsu. 177 p.
24
Fast, M.D.; Hosoya, S.; Johnson, S.C. and Afonso, L.O.B., 2008. Cortisol response and immune-related effects of Atlantic salmon (Salmo salar Linnaeus) subjected to short and long-term stress. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 24, pp: 194-204.
25
Francis-Floyd, R., 2009. Stress - Its Role in Fish Disease. University of Florida. IFAS Extension. pp: 1-4.
26
Frick, L.H.; Reina, R.D. and Walker, T.I., 2009. The physiological response of Port Jackson sharks and Australian swellsharks to sedation, gillnet capture, and repeated sampling in captivity. N. Am. J. Fish. Manag. Vol. 29, pp: 127-139.
27
Gehris, T.L.; Kathol, R.G.; Black, D.W. and Noyes, R., 1990. Urinary free cortisol levels in obsessive compulsive disorder. Psychiatry Research. Vol. 32, No. 2, pp: 151-158.
28
Goos, H.J.T. and Consten, D., 2002. Stress adaptation, cortisol and pubertal development in the male common carp, Cyprinus carpio. Molecular and Cellular Endocrinology. Vol. 197, pp: 105-116.
29
Haukenes, A.H.; Barton, B.A. and Bollig, H., 2008. Cortisol responses of pallid sturgeon and yellow perch following challenge with lipopolysaccharide. Journal of Fish Biology. Vol. 72, pp: 780-784.
30
Heberer, C.; Aalbers, S.A.; Bernal, D.; Kohin, S.; DiFiore, B. and Sepulveda, C., 2010. Insights into catch-and-release survivorship and stress-induced biochemistry of common thresher sharks (Alopias vulpinus) captured in the Southern California recreational fishery. Fish. Res. Vol. 106, pp: 495-500.
31
Iwama, G.K.; Vijayan, M.M.; Forsyth, R.B. and Ackerman, P.A., 1999. Heat shock proteins and physiological stress in fish. Am. Zool. Vol. 39, No. 6, pp: 901-909.
32
Koeypudsa, W. and Jongjareanjai, M., 2011. Impact of water temperature and sodium chloride (NaCl) on stress indicators of hybrid catfish (Clariasgariepinus, Burchell x C. macrocephalus, Gunther). Songklanakarin Journal of Science and Technology. Vol. 33, No. 4, pp: 369-374.
33
Laiz-Carrión, R.; Sangiao-Alvarellos, S.; Guzmán, J.M.; Martin del Rio, M.P.; Míguez, J.M.; Soengas, J.L. and Mancera, J.M., 2002. Energy metabolism in fish tissues related to osmoregulation and cortisol action. Fish Physiol. Biochem. Vol. 27, pp: 179-188.
34
Lappivaara, J., 2001. Effects of acute handling stress on Whitefish Coregonus lavaretus after prolonged exposure ntreated bleached Kraft mill effluent. Archives of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 41, pp: 55-64.
35
Makvanid, H.; Khodadadi, M.; Keyvanshokoh, S. and Mohammadi-makvandi, Z., 2012. Effect of salinity stress on hormone of cortisol and glucose of Ctenopharyngodon idella. J. Aquat. Fish. Vol. 2, pp: 77-84.
36
Marshall, H.; Field, L.; Afiadata, A.; Sepulveda, C.; Skomal, G. and Bernal, D., 2012. Hematological indicators of stress in longline-captured sharks. Comparative Biochemistry and Physiology a Molecular and Integrative Physiology. Vol. 162, pp: 121-129.
37
Milla, S.; Mathieu, C.; Wang, N.; Lambert, S.; Nadzialek, S.; Massart, S.; Henrotte, E.; Douxfils, J.; Mélard, C.; Mandiki, S.N.M. and Kestemont, P., 2010. Spleen immune status is affected after acute handling stress but not regulated by cortisol in Eurasian perch, Perca fluviatilis. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 28, pp: 931-941.
38
Milligan, C.L., 1996. Metabolic recovery from exhaustive exercise in rainbow trout. Comp Biochem Physiol, A. Vol. 113, pp: 51-60.
39
Mladineo, I; Block, B., 2009. Expression of Hsp70, Na+/K+ ATP-ase, HIF-1α, IL-1β and TNF-α in captive Pacific bluefin tuna (Thunnus orientalis) after chronic warm and cold exposure. J. Exp. Mar. Biol. Ecol. Vol. 374, pp: 51-57.
40
Morales, A.E.; Cardenete, G.; Abellan, E. and Garcia Rejon, L., 2005. Stressrelated physiological responses to handling in common dentex (Dentex dentex Linnaeus, 1758). Aquaculture Reaserch. Vol. 36, pp: 33-40.
41
Moyes, C.D.; Fragoso, N.; Musyl, M. and Brill, R.W., 2006. Predicting post-release survival in large pelagic fish. Trans. Am. Fish. Soc. Vol. 135, pp: 1389-1397.
42
Oliver, S.; Braccini, M.; Newman, S.J. and Harvey, E.S., 2015. Global patterns in the bycatch of sharks and rays. Marine Policy. Vol. 54, pp: 86-97.
43
Olla, B.L.; Davis, M.W. and Schreck, C.B., 1997. Effects of simulated trawling on sablefish and walleye pollock: the role of light intensity, net velocity and towing duration. Journal of Fish Biology. Vol. 45, pp:1181-1194.
44
Olla, B.L.; Davis, M.W. and Schreck, C.B., 1998. Temperature magnified postcapture mortality in adult sablefish after simulated trawling. Journal of Fish Biology. Vol. 53, pp: 743-751.
45
Olsen, R.E.; Sundell, K.; Hansen, T.; Hemre, G.I.; Myklebust, R.; Mayhew, T.M. and Ringø, E., 2003. Acute stress alters the intestinal lining of Atlantic salmon, Salmo salar L. An electron microscopical study. Fish Physiol Biochem. Vol. 26, pp: 211-221.
46
Pottinger T.G. Rand Weaver M. And Sumpter J.P., 2003. Overwinter fasting and re-feeding in rainbow trout: Plasma growth hormone and cortisol levels in relation to energy mobilization. Comparative Biochemistry and Physiology B. Vol. 136, No. 3, pp: 403-417.
47
Ramsay, J.M.; Feist, G.W.; Varga, Z.M.; Westerfield, M.; Kent, M.L. and Schreck, C.B., 2006. Whole- body Cortisol is an indicator of crowding stress in adult zebrafish, Danio rerio. Aquaculture. Vol. 258, pp: 565-574.
48
Santos, M.A. and M. Pacheco., 1996. Anguilla anguilla L. Stress biomarkers recovery in clean water and secondarytreated pulp mill effluent. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 35, pp: 96-100.
49
Schlenker, L.; Latour, R.; Brill, R.W. and Graves, J.E., 2016. Physiological stress and post-release mortality of white marlin (Kajikia albida) caught in the United States recreational fishery. Conservation Phisiologhy. Vol. 4, No. 1, pp: 1-15.
50
Skomal, G.B., 2006. The physiological effects of capture stress on post-release survivorship of sharks, tunas and marlin. PhD Thesis Boston University, Boston, MA.
51
Skomal, G.B., 2007. Evaluating the physiological and physical consequences of capture on post-release survivorship in large pelagic fishes. Fish Manage Ecol. Vol. 14, pp: 81-89.
52
Skomal, G. and Bernal, D., 2010. Physiological responses to stress in sharks. In: Carrier, J.; Musick, J. and Heithaus, M., (Eds.), Sharks and Their Relatives II: Biodiversity, Adaptive Physiology, and Conservation. CRC Press, Boca Raton. pp: 459-490.
53
Skomal, G.B. and Mandelman, J.W., 2012. The physiological response to anthropogenic stressors in marine elasmobranch fishes: A review with a focus on the secondary response. Comparative Biochemistry and Physiology and Molecular and Integrative Physiology. Vol. 162, pp: 146-155.
54
Skov, C.; Chapman, B.B.; Baktoft, H.; Brodersen, J.; Brönmark, C.; Hansson, L.A.; Hulthén, K. and Nilsson, P.A., 2013. Migration confers survival benefits against avian predators for partially migratory freshwater fish. Biology Letters. Vol. 9, pp: 1098-1178.
55
Stevens, J.D.; Bonfil, R.; Dulvy, N.K. and Walker, P.A., 2000. The effects of fishing on sharks, rays, and chimaeras (chondrichthyans), and the implications for marine ecosystems. Ices Journal of Marine Science. Vol. 57, pp: 476-494.
56
Suski, C.D.; Killen, S.S.; Kieffer, J.D. and Tufts, B.L., 2006. The influence of environmental temperature and oxygen concentration on the recovery of largemouth bass from exercise: implications for live-release angling tournaments. J Fish Biol. Vol. 68, pp: 120-136.
57
Suski, C.D.; Cooke, S.J.; Danylchuck, A.J.; O’Connor, C.M.; Gravel, M.A.; Redpath, T.; Hanson, K.C.; Gingerich, A.J.; Murchie, K.J. and Danylchuck, S.E., 2007. Physiological disturbances and recovery dynamics of bonefish (Albula vulpes), a tropical marine fish, in response to variable exercise and exposure to air. Comp Biochem Physiol A. Vol. 148, pp: 664-673.
58
Suuronen, P., 2005. Mortality of fish escaping trawl gears.FAO Fisheries (Food and Agriculture Organization of theUnited Nations) Technical Paper. 478 p.
59
Tanck, M.W.T.; Booms, G.H.R.; Eding, E.H.; Bonga, S.E. and Komen, J., 2000.Cold shocks: a stressor for common carp. Journal of Fish Biology. Vol. 57, pp: 881-894.
60
Tedeschi, J.N.; Kennington, W.J.; Berry, O.; Whiting, S.; Meekan, M. and Mitchell, N.J., 2015. Increa sed expression of Hsp70 and Hsp90 mRNA as biomarkers of thermal stress loggerhead turtle embryos (Caretta caretta). Journal of Termal Biology. Vol. 47, pp: 42-50.
61
Wang, Y.Y.; Zhang, C.Z.; Ma, Y.Q.; He, Z.X.; Zhe, H. and Zhou, S.F., 2015. Therapeutic effects of C-28 ethyl ester of 2-cyano-3,12-dioxoolean-1,9-dien-28-oic acid (CDDO Me; bardoxolone methyl) on radiation-induced lung inflammation and fibrosis in mice. Drug Des Devel Ther. Vol. 9, pp: 3163-3178.
62
Waring, C.P.; Stagg, R.M. and Poxton, M.G., 1996. Physiological responses to handling in the turbot. Journal of Fish Biology. Vol. 48, pp: 161-173.
63
Wendelaar Bonga, S.E., 1997. The stress response in fish. Physiol Rev. Vol. 77, pp: 591-625.
64
Xing, H.; Li, Sh.; Wang, X.; Gao, X.; Xu, Sh. And Wang, X., 2013. Effects of atrazine and chlorpyrifos on the mRNA levels of HSP70 and HSC70 in the liver, brain, kidney and gill of Common carp (Cyprinus carpio). Chemosphere. Vol. 90, No. 3, pp: 910-916.
65
Wilson, S.M.; Raby, G.D.; Burnett, N.J.; Hinch, S.G. and Cooke, S.J., 2014. Looking beyond the mortality of bycatch: sublethal effects of incidental capture on marine animals. Biological Conservation. Vol. 171, pp: 61-72.
66
Wood, C.M.; Turner, J.D. and Graham, M.S., 1983. Why do fish die after severe exercise? J Exp Biol. Vol. 22, pp: 189-201.
67
Vijayan, M.M.; Reddy, P.K.; Leatherland, J.F. and Moon, T.W., 1994b. The effects of cortisol on hepatocyte metabolism in rainbow trout: a study using the steroid analogue RU486. Gen. Comp. Endocrinol. Vol. 96, pp: 75-84.
68
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی پتانسیل و اولویت بندی تیپ های گیاهی شهرستان تبریز از دیدگاه غنای گونه ای برای کاربری زنبورداری
تعیین شایستگی مرتع برای کاربری های مختلف یکی از اهداف مدیریت اصولی منابع طبیعی بوده و ضامن توسعه پایدار است. بنابراین، هدف این تحقیق، مطالعه شایستگی تیپ های مختلف گیاهی موجود در مراتع منطقه تبریز برای زنبورداری میباشد. بدین منظور با استفاده از نقشه تیپ های گیاهی منطقه و نیز مطالعات مرتبط، جذابیت گیاهان تعیین و تعداد گونه های جذاب برای تیپ ها مشخص گردیدو سپس نقشه نهایی طبقه بندی پتانسیل تیپ ها از نظر کاربری زنبورداری و زنبورپذیری تهیه شد. نتایج نشان داد که تعداد 250 گونه جذاب برای زنبور عسل در منطقه وجود دارد و بیش ترین گونه از لحاظ جذابیت برای گردهزایی و شهدزایی مربوط به تیپ Bromus tomentollus،Astragalus chrysostachys Acantholimon bracteatum با تعداد 68 گونه می باشد.تیپ های Aeluropus littoralisو Halocnemum strabilaceum فاقد گونه های جذاب برای زنبورعسل می باشد. شوری خاک در قسمتها و شورهزارهای اطراف دریاچه ارومیه سبب کاهش پتانسیل تیپ های موجود در این مناطق شده است. با توجه به نتایج این پژوهش، در حدود 77 درصد از مساحت مراتع منطقه (550873 هکتار)، قابلیت متوسط و بالا جهت پرورش زنبورعسل را دارد. بنابراین اکثر سطح منطقه مورد مطالعه از لحاظ پتانسیل زنبورداری و دارا بودن گیاهان جذاب زنبور عسل دارای طبقه متوسط (S2)هستند. با توجه به نتایج حدود 77 درصد از مراتع منطقه دارای پتانسیل متوسط به بالا برای زنبورداری بوده که با رعایت اصول می توان جهت زنبورداری اقدام و ضمن کسب درآمد، با کاهش فشار چرای دام به احیاء مرتع کمک کرد که درنهایت زمینهساز مدیریت اصولی و صحیح مراتع منطقه، حفاظت خاک و آب و افزایش پوشش گیاهی منطقه می شود.
http://www.aejournal.ir/article_92470_65399b294b943d9069a36cfca5530659.pdf
2019-07-23
329
338
شایستگی مرتع
زنبورداری
تیپ های گیاهی
تبریز
ذبیح اله
نعمتی
znnemati@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی اهر، دانشگاه تبریز، اهر، ایران
AUTHOR
سجاد
قنبری
ghanbarisajad@gmail.com
2
گروه جنگلداری، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی اهر، دانشگاه تبریز، اهر، ایران
LEAD_AUTHOR
اسماعیل
شیدای کرکج
esmaeil_sheidayi@yahoo.com
3
گروه مرتع و آبخیزداری، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
AUTHOR
محسن
سبزی نوجه ده
m.sabzinojedeh@gmail.com
4
گروه جنگلداری، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی اهر، دانشگاه تبریز، اهر، ایران
AUTHOR
امیری، ف. و ح. ارزانی. 1391. تعیین اولویت مکان های مناسب زنبورداری با استفاده از روش تحلیل سلسله مراتبی (AHP). تحقیقات مرتع و بیابان ایران. دوره 19، شماره 1، صفحات 159 تا 177.
1
توپچی، ژ. و علمی، م.، 1388. شناسایی و معرفی گیاهان دارویی مورد استفاده زنبور عسل در منطقه کندوان استان آذربایجان شرقی. مجله اکوفیزیولوژی گیاهان زراعی (علوم کشاورزی). دوره 9، شماره 3، صفحات 75 تا 88.
2
جوادی، س.ا.؛ سلسله، م.؛ ارزانی،ح. و فولادآملی، م.، 1389. طبقه بندی شایستگی مراتع لار برای زنبورداری با استفاده از GIS. مجله گیاه و زیست بوم. سال 5، شماره 21، صفحات 93 تا 106.
3
رستگار، ش.؛ بارانی، ح.؛ سپهر، ع. و اکبرزاده، م.، 1387. تعیین میزان جذابیت گیاهان مرتعی مورد استفاده زنبور عسل و تهیه تقویم زنبورداری در مراتع ییلاقی پلور. مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی. سال 15، شماره 1، صفحات 91 تا 101.
4
صباغی، ش.؛ نظریان، ح.؛ طهماسبی، غ.ح. و اکبرزاده، م.، 1383. شناسایی گیاهان مورد استفاده زنبور عسل و تعیین جذابیت آن ها در منطقه شمال شهرستان دماوند. مجله پژوهش و سازندگی. سال 17، شماره 4، صفحات 6 تا 18.
5
صفائیان، ر.، 1384. استفاده چند منظوره از مراتع (مطالعه موردی منطقه طالقان). پایان نامه کارشناسی ارشد دانشکده منابع طبیعی دانشگاه تهران. 167 صفحه.
6
فدایی، ش.؛ ارزانی، ح.؛ آذرنیوند، ح.؛ نهضتی، غ.؛ کابلی، س.ح. و امیری، ف.، 1390. مدل شایستگی مرتع از جنبه زنبورداری با استفاده از GIS (مطالعه موردی: مراتع طالقان میانی). مجله سنجش از دور و سامانه اطلاعات جغرافیایی در منابع طبیعی (کاربرد سنجش از دور و GIS در علوم منابع طبیعی). سال 2، شماره 1، صفحات 31 تا 46.
7
فقیه، ا.ر.؛ عبادی، ر.؛ نظریان، ح. و نوروزی، م.، 1384. تعیین جذابیت گونه های مختلف گیاهی برای زنبورعسل در مناطق خوانسار و فریدن اصفهان. مجله علوم کشاورزی ایران. سال 36، شماره 3، صفحات 521 تا 536.
8
کریمی، ع. و جعفری، ع.، 1394. معرفی گیاهان مورد استفاده زنبور عسل در شهرستان سپیدان. انتشارات وزارت جهاد کشاورزی. 24 صفحه.
9
مخدوم، م.، 1389. شالوده آمایش سرزمین، انتشارات دانشگاه تهران. 304 صفحه.
10
مصداقی، م.، 1389. مرتعداری در ایران. انشتارات دانشگاه امام رضا (ع). 336 صفحه.
11
موسسه تحقیقات جنگل ها و مراتع کشور. 1388. طرح شناخت مناطق اکولوژیک کشور، تیپ های گیاهی منطقه تبریز. انتشارات موسسه تحقیقات جنگل ها و مراتع کشور. 142 صفحه.
12
موقری، م.؛ ارزانی، ح.؛ طویلی، ع. و موقری، ع.، 1393. طبقه بندی شایستگی مراتع حوزه آبخیز لاسم برای زنبورداری با به کارگیری سیستم اطلاعات جغرافیایی (GIS). مجله مرتعداری. سال 1، شماره 4، صفحات 46 تا 69.
13
Amiri, F. and Shariff, A.R.B.M., 2012. Application of geographic information systems in land-use suitability evaluation for beekeeping: A case study of Vahregan watershed (Iran). African Journal of Agricultural Research. Vol. 7, No. 1, pp: 89-97.
14
Amiri, F., 2009. A model for classification of range suitability for sheep grazing in semi-arid regions of Iran. Livestock Research for Rural Development. Vol. 21, No. 5, pp: 241-266.
15
Estoque, R.C. and Murayama, Y., 2010. Suitability analysis for beekeeping sites in La Union, Philippines, using GIS and multi-criteria evaluation techniques. Res. J. Appl. Sci. Vol. 5, No. 3, pp: 242-253.
16
FAO. 1991. Guidelines: land evaluation for extensive grazing. Food & Agriculture Org.
17
Geneletti, D.; Salinas, E.; Marchi, A. and Orsi, F., 2010. Designing and comparing zoning for the Viñales National Park, Cuba. Geografía Y Sistemas De Información Geográfica. Vol. 2, pp: 164-185.
18
Matsumoto, S.; Abe, A. and Maejima, T., 2009. Foraging behavior of Osmia cornifrons in an apple orchard. Scientia horticulturae. Vol. 121, No. 1, pp: 73-79.
19
ORIGINAL_ARTICLE
اولین گزارش از مورچه ها (Hymenoptera: Formicidae) در باتلاق های نمکی و شوره زارهای نواحی مرکز ایران
طی تحقیقی که در باتلاق های نمکی و شوره زارهای نواحی مرکزی ایران در سال های 1395 و 1396 انجام گرفت، تعداد 21 نمونه مورچه به روش تله گذاری و دستی در 3 فصل بهار، تابستان و پائیز از 5 ایستگاه جمع آوری شدند. از این تعداد 9 گونه متعلق به 5 جنس و 5 قبیله و از 2 زیرخانواده Myrmicinae و Formicinae به شرح ذیل مورد شناسایی قرار گرفتند: Subfamily: Myrmicinae Tribe: Stenammini Genus: Messor Species: 1) Messor ebeninus Tribe: Solenopsidini Genus: Monomorium Species: 2) Monomorium indicum 3) Monomorium sp. Tribe: Crematogastrini Genus: Tetramorium Species: 4) Tetramorium sp. Subfamily: Formicinae Tribe: Formicini Genus: Cataglyphis Species: 5) Cataglyphis niger 6) Cataglyphis bellicosus 7) Cataglyphis setipes 8) Cataglyphis lividus Tribe: Plagiolepidini Genus: Lepisiota Species: 9) Lepisiota dolabellae تمامی گونه ها اولین بار از باتلاق های نمکی و شوره زارهای نواحی مرکزی ایران گزارش می شوند و تمامی نمونه ها مورد تائید پروفسور برایان تیلور عضو انجمن حشره شناسان سلطنتی انگلستان قرار گرفته است.
http://www.aejournal.ir/article_95440_7177f940c3e4e00e2d856f8aef2d81c7.pdf
2019-07-23
339
346
Biodiversity
جانوران
حشرات
تنوع زیستی
شوره زار
نواحی مرکزی ایران
محمدرضا
محسنی
mrmohseni1992@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
شاهرخ
پاشایی راد
sp2191@gmail.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم و فناوری های زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
نسیم
حیاتی رودباری
nasimhayatinasimhayati@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
آرام، ا.، 1393. بررسی فونستیک و فراوانی مورچه های خانواده Formicidae در استان اردبیل شهرستان خلخال خورشه. گرایش بیوسیستماتیک جانوری. دانشکده زیست شناسی، دانشگاه آزاد واحد تهران پزشکی. 145 صفحه.
1
ارده،م.ج.، 1373. بررسی ویژگی های رده بندی و رفتاری مورچه های منطقه کرج. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده کشاورزی دانشگاه تهران. 108 صفحه.
2
حسین نژاد، س.، 1389. بررسی فونستیک و تنوع زیستی مورچه ها (Hymenoptera: Formicidae) در شهرستان زنجان و حومه. پایان نامه کارشناسی ارشد، گرایش بیوسیستماتیک جانوری. دانشکده علوم زیستی، دانشگاه شهید بهشتی. 113 صفحه.
3
نفیسی فرد، ر.، 1392. بررسی فونستیک و فراوانی مورچه ها (Hymenoptera: Formicidae) در شهرستان سبزوار و حومه. پایاننامه کارشناسی ارشد، گرایش بیوسیستماتیک جانوری. دانشکده علوم زیستی، دانشگاه شهید بهشتی. 103 صفحه.
4
سازمان کل هواشناسی ایران. 1334. بررسی شرایط آب و هوایی نواحی مرکزی ایران. دریافت شده در سال 1396. http://www.irimo.ir
5
Agosti, D. and Johnson, N.F., 2003. La nueva taxonomía de hormigas. Fernández, F. Introducción a las hormigas de la región neotropical. Smithsonian Institution Press: Capítulo 6 y Anexo 1. 2003. Impreso en Bogotá, Colombia. pp: 45-48.
6
Bolton, B., 1994. Identification Guide to the Ant Genera of the World. Harvard University Press: Cambridge, Massachusetts, USA. 222 p.
7
Bolton, B., 2013. AntCat. Retrieved 17 January 2015. "An online catalog of the ants of the world". http://www.antcat.org
8
Childress, E.S. and Koning, A.A., 2013. Polydomous Crematogaster pilosa (Hymenoptera: Formicidae). colonies prefer highly connected habitats in a tidal salt marsh. Florida Entomologist. Vol. 96, pp: 235-237.
9
Collingwood, C.A., 1985. Hymenoptera: Fam. Formicidae of Saudi Arabia. Fauna of Saudi Arabia. Vol.7, pp: 230-302.
10
Collingwood, C.A. and Agosti, D., 1996. Formicidae (Insecta: Hymenoptera) of Saudi Arabia (Part 2). Fauna of Saudi. Vol. 15, pp: 300-385.
11
Davis, L.V. and Gray, I.E., 1966. Zonal and seasonal distribution of insects in North Carolina salt marshes. Ecological Monographs. Vol. 36, pp: 275-295.
12
Emery, C., 1906. Rassegna critica delle specie paleartiche del genere Myrmecocystus. Memorie Reale Accademia Scienze dell'istituto di Bologna, Series 6. Vol. 3, pp: 173-187.
13
Folgarait, P.J., 1998. Ant biodiversity and its relationship to ecosystem functioning: a review. Biodiversity and Conservation. doi:10.1023/A:1008891901953. Vol. 7, No. 9, pp: 1221-1244.
14
Foster, W.A. and Treherne, J.E., 1976. Insects of marine saltmarshes: problems and adaptations, InCheng L [ed.], Marine Insects. North-Holland Publishing Company, Amsterdam, Holland. pp: 5-42.
15
Forel, A., 1904. Dimorphisme du mâle chez les fourmis et quelques autres notices myrmécologiques. Annales de la Société Entomologique de Belgique. Vol. 48, pp: 421-425.
16
Goulet, H. and Hubert, J.F., 1993. Hymenoptera of the world. An identification guide to families. Research Branch, Agricultural Canada Publication. Canada Communication Group‐Publishing, Ottawa. 668 Seiten. Preis: FF 412. ISBN 0‐660‐14933‐8.
17
Hashimoto, Y., 2003. Identification guide to ant genera of Borneo. Inventory and Collection. Total protocol for understanding of biodiversity, Chapter: 9, Publisher: Institute for Tropical Biology and Conservation, Universiti Malaysia Sabah and Japan International Cooperation Agency(JICA), Editors: Yoshiaki Hashimoto, Homathevi Rahman. pp: 89-162.
18
Jones, A.S., 2008. Fantastic ants-Did you know? National Geographic Magazine. Archived from the original on 30 July 2008.Retrieved 5 July 2008.
19
Loken, L.C. and Oliver, S.K., 2016. Habitat Requirements and Occurrence of Crematogaster pilosa (Hymenoptera: Formicidae) Ants within Intertidal Salt Marshes. Florida Entomologist. Vol. 99, No. 1, pp: 82-88.
20
McCoy, E.D. and Rey, J.R., 1987. Terrestrial arthropods of northwest Florida salt marshes: Hymenoptera (Insecta). Florida Entomologist. Vol. 70, pp: 90-97.
21
Menozzi, C., 1927. Zur Erforschung des Persischen Golfes (Beitrag nr. 12) Formicidae (Hym.). Supplementa Entomologica. Vol. 16, pp: 117-119.
22
Paknia, O.; Radchenko, A. and Pfeiffer, M., 2010.New records of ants (Hymenoptera: Formicidae) from Iran. AsianMyrmecology. Vol. 3, pp: 29-38.
23
Pétillon, J.; Montaigne, W. and Renault, D., 2009. Hypoxic coma as a strategy to survive inundation in a salt marsh inhabiting spider. Biology Letters. Vol. 23, No. 5, pp: 442-445.
24
Radchenko, A.G., 1998. A Key to Ants of the Genus Cataglyphis forester (Hymenoptera, Formicidae from Asia). Entomological Review. Vol. 78, No. 4, pp: 475-480.
25
Sanders, D. and van Veen, F.J.F., 2011. Ecosystem engineering and predation: the multi-trophic impact of two ant species. Journal of Animal Ecology. Vol. 80, pp: 569-576. doi:10.1111/j.1365-2656.2010.01796. x.
26
Schultz, T.R., 2000. In search of ant ancestors. Proceedingsof the National Academy of Sciences.Vol.97, No. 26, pp: 14028-14029.
27
Thomas, P., 2007. Pest Ants in Hawaii. Hawaiian Ecosystems at risk project (HEAR). Retrieved 6 July 2008.
28
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی اثر پارامترهای اقلیمی در صید میگوهای تجاری با استفاده از آزمون مؤلفههای اصلی (استان هرمزگان)
میگو ازجمله آبزیانی است که از سالیان گذشته یکی از اقلام اصلی غذائی مردمان مناطق جنوب بهویژه استان هرمزگان را تشکیل داده است، ازاینرو نوسانات این ذخایر به منظور دستیابی به صید پایدار همواره مورد توجه مسئولین قرار گرفته است. در این مطالعه به ارزیابی ارتباط بین فاکتورهای هواشناسی (میانگین سرعت باد، درجه حرارت و میزان بارندگی) در زمان برداشت (مهر و آبان) با میزان صید در بازه زمانی سیساله 1394-1364، پرداخته شده است. بهمنظور بررسی پارامترهای اقلیمی انتخاب شده با میزان صید میگو از آزمون تجزیه مؤلفههای اصلی استفاده شد. نتایج مربوط به شاخص KMO در این آزمون 0/71 بوده و آزمون بارتلت معنیدار بوده است. نتایج نشان داد که مؤلفه اول شامل صید کل میگو (0/03)، میانگین سرعت باد (0/06)، درجه حرارت (0/82) و میزان بارندگی (0/33) با 33/58 درصد و مولفه دوم شامل صید کل میگو (0/76)، میانگین سرعت باد (0/84-)، درجه حرارت (0/28) و میزان بارندگی (0/79) با 28/67 درصد از کل واریانس ها (62/25 درصد)، می تواند برای شناسایی مهمترین پارامترهای مؤثر در تغییرات صید کل میگو استان در سیساله اخیر استفاده گردد. بهعلاوه، بررسی ضرایب مربوط به بارهای عاملی بارگذاری شده حاصل از آزمون مؤلفهها نشان داد که بارش با بار عاملی (0/79) و میانگین سرعت باد با نمره عاملی 0/84-، در مؤلفه دوم بیش ترین عامل اثرگذار مثبت و منفی بر تغییرات صید کل میگو (0/76)، در دوره سیساله داشته است. تأثیر باد در کاهش نرخ صید میگوهای تجاری در صیدگاه های استان هرمزگان را شاید بتوان به راندمان کم تر ابزار صید ترال کف به دلیل قرار نگرفتن تخته ها و زنجیرهای این ابزار صید بر روی بستر دریا، مرتبط دانست، هم چنین به نظر می رسد میزان بارش سالانه بر روی میزان صید در صیدگاه ها تأثیری نباید داشته باشد و تأثیر آنها می تواند بر روی ذخایر میگوهای جوان در مناطق نوزادگاهی در ذخایر سال قبل از حضور در صیدگاه ها صورت پذیرفته باشد.
http://www.aejournal.ir/article_95457_f56b039caf1fbf76cdac40b6f5e6e89d.pdf
2019-07-23
347
352
میگوی موزی
پارامترهای هواشناسی
میزان صید
PCA و خلیجفارس
سیامک
بهزادی
s_behzady@yahoo.com
1
پژوهشکده اکولوژی خلیجفارس و دریای عمان، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
غلامعلی
اکبرزاده چماچائی
2
پژوهشکده اکولوژی خلیجفارس و دریای عمان، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
محمد
مومنی
msmk63@yahoo.com
3
پژوهشکده اکولوژی خلیجفارس و دریای عمان، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
علی
سالارپوری
salarpouri@yahoo.com
4
پژوهشکده اکولوژی خلیجفارس و دریای عمان، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
محمد
درویشی
m.darvishi70@yahoo.com
5
پژوهشکده اکولوژی خلیجفارس و دریای عمان، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
سیده لیلی
محبی نوذر
6
پژوهشکده اکولوژی خلیجفارس و دریای عمان، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
محمدصدیق
مرتضوی
mseddiq1@yahoo.com
7
پژوهشکده اکولوژی خلیجفارس و دریای عمان، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، م.، 1373. بررسی شرایط هیدرولوژی و زیستمحیطی زیستگاههای عمده میگوی موزی (P. merguiensis) در آبهای استان هرمزگان. مرکز تحقیقات علوم شیلاتی. 45 صفحه.
1
اکبرزاده چماچائی، غ.ع.؛ جوکار، ک.؛ مرتضوی، م.ص.؛ ابراهیمی، م.؛ روحانی، ک.؛ دهقانی، ر.؛ کمالی، ع.؛ سراجی، ف. و اسلامی، ف.، 1383. بررسی اثرات زیستمحیطی ناشی از فعالیت کارگاههای پرورش میگو در منطقه تیاب (استان هرمزگان). موسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده اکولوژی خلیجفارس و دریای عمان، بندرعباس. 145 صفحه.
2
ایران، ع.م. و روحانیان، م.، 1364. بررسی مقدماتی خورهای استان هرمزگان. مؤسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده اکولوژی خلیجفارس و دریای عمان. 104 صفحه.
3
جوکار، ک.؛ اکبرزاده، غ.ع. و محبی نوذر، س.ل.، 1389. مطالعه خورهای حوضه شرق و غرب استان هرمزگان. مؤسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده اکولوژی خلیجفارس و دریای عمان. 99 صفحه.
4
عالی زاده، ا. و اولیایی، م.، 1395. گزارش وضعیت صید سال 1394. واحد آمار اداره کل شیلات استان هرمزگان. 56 صفحه.
5
کامرانی، ا.؛ صفایی، م.؛ مؤمنی، م.؛ سالارپوری، ع.؛ درویشی، م. و بهزادی، س.، 1377. برآورد زیتوده میگوهای مهم تجاری استان، مؤسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان. 74 صفحه.
6
مؤمنی، م.؛ سالارپوری، ع.؛ بهزادی، س.؛ درویشی، م.؛ خواجهنوری، ک. و دقوقی، ب.، 1392. ارزیابی ذخایر میگو موزی در آبهای ساحلی استان هرمزگان. موسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده اکولوژی خلیجفارس و دریای عمان. 91 صفحه.
7
مؤمنی، م.؛ سالارپوری، ع.؛ بهزادی، س.؛ درویشی، م.؛ خواجهنوری، ک. و دقوقی، ب.، 1395. ارزیابی ذخایر میگو موزی در آبهای ساحلی استان هرمزگان. موسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده اکولوژی خلیجفارس و دریای عمان. 91 صفحه.
8
Al Senafi, F. and Anis, A., 2015. Shamals and climate variability in the Northern Persian Gulf from 1973 to 2012. International Journal of Climatology. Vol. 35, No. 15, pp: 4509-4528.
9
Chen-Wuing, L.; Kao-Hung, L. and Yi-Ming Kuo, L., 2007. Application of factor analysis in the assessment of groundwater quality in a blackfoot disease area in Taiwan. Science of the Total Environment. Vol. 313, No. 1, pp: 77-89.
10
IGBP. 1994. IGBP in action: work plan 1994-1998. IGBP report No. 28, Stockholm.
11
Maynou, F. and Sarda, F., 2001. Influence of environmental factors on commercial trawl catches of Nephrops norvegicus (L). ICES Journal of Marine Science. Vol. 58, pp: 1318-1325.
12
Rothlisberg, P.C. and Okey, T.A., 2006. Variation in banana prawn catches at Weipa: a comprehensive regional study. Fisheries Development Research Corporation Final Report 2004/024. CSIRO Marine and Atmospheric Research, Cleveland, Australia.
13
Shahraki, M.; Fry, B.; Krumme, U. and Rixen, T., 2014. Microphytobenthos sustain fish food webs in intertidal arid habitats: a comparison between mangrove-lined and un-vegetated creeks in the Persian Gulf. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 149, pp: 203-212.
14
Siddiquee, S.; Yusof, N.A.; Salleh A.B.; Tan G.S.; Bakar, F.A.; Yap, C.K. and Ho, C.L., 2011. Assessment of surface water quality in the Malaysian Coastal waters by using multivariate analyses. Sains Malaysiana. Vol. 40, No. 10, pp: 1053-1064.
15
www.hormozganmet.ir
16
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی کیفیت آب دریاچه نئور (پارامترهای میکروبی و فیزیکوشیمیایی) به منظور آبزی پروری
این تحقیق با هدف بررسی پارامترهای میکروبی و فیزیکوشیمیایی آب دریاچه نئور انجام گرفت. 5 ایستگاه با توجه به موقعیت جغرافیایی، ارتفاع آب، جریان های ورودی به دریاچه انتخاب گردید. نمونه برداری دوبار در هر فصل (از فصول بهار و تابستان و پاییز) 1395صورت گرفت. آزمون های میکروبی شامل شمارش تعداد کل باکتری، تعداد کلی فرم و تعداد کلی فرم مدفوعی، استرپتوکوکی و باکتری های احیاکننده سولفیت انجام گرفت. بیش ترین میزان تراکم باکتری های هتروتروف در تابستان و در ایستگاه 1 بود (50000 cfu/ml ) و بیش تر از استاندارد بود. بیش ترین میزان باکتری های کلی فرم مدفوعی در پاییز در ایستگاه های 1و3 مشاهده شد (110 cfu/ml ). بیش ترین میزان فراوانی استرپتوکوکی نیز در فصل تابستان در ایستگاه 3 (110 cfu/ml) بود. بیش ترین میزان فراوانی باکتری های احیاکننده سولفیت در بهار در ایستگاه 1 بود. نیترات، آمونیوم و فسفات در تمامی فصول در حد مجاز (استاندارد EPA) بود. COD ،BOD و pH در برخیاز فصول بیش تر از حد مجاز (استاندارد EPA) بود میزان باکتری های هتروتروف، کلی فرم و کلی فرم مدفوعی و استرپتوکوکی در برخی از فصول بالاتر از حد استاندارد بود و دلیل آن، بالارفتن دمای محیط و آب، عبور دام و احشام در منطقه و برخی فعالیت های توریستی و کشاورزی در فصول گرم سال و تلاطم باد و آب و افزایش رسوبات در پاییز بود. این دریاچه، به دلیل بالابودن برخی پارامترها، برای زیست ماهیان خصوصاً ماهیان سردآبی مطلوب نمی باشد.
http://www.aejournal.ir/article_93724_256ed7e36946e3f64058a29acf47f431.pdf
2019-07-23
353
360
نئور
باکتری
هتروتروف
کلی فرم
کلی فرم مدفوعی
استرپتوکوک
منیره
فئید
m_faeed@yahoo.com
1
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
LEAD_AUTHOR
حجت
خداپرست
sharifi_seyed@yahoo.com
2
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
محمدرضا
مهرابی
drmehrabi@gmail.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
سید فخرالدین
میر هاشمی نسب
mirhashemi_v@yahoo.com
4
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
استاندارد ملی ایران 4208. 1376. کیفیت آب. نمونه برداری از آب برای آزمون های میکروبیولوژی. آیین کار، موسسۀ استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران. صفحات 2 تا 43.
1
استاندارد ملی ایران 3759. 1386. جستجو و شمارش کلی فرم ها در آب به روش چند لوله ای. موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران. چاپ اول.
2
استاندارد 7225. 1382. جستجو و شناسایی کلی فرم ها در آب به روش وجود یا عدم وجود. موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران. چاپ اول.
3
باقری، م.؛فرزان، م.؛طالبی،م.؛کرمی،م. ومنصوری، پ.، 1396. مقایسه پارامترهای کیفی آب رودخانه های صمصامی و دیناران با استانداردهای کیفی آب برای پرورش ماهی. مجله علمی شیلات ایران. دوره 26، شماره 4، صفحات 25 تا 36.
4
بینش برهمند، م.؛ نبیزاده، ر.؛ ندافی، ک. و مصداقی نیا، ع.، 1391. آنالیز کیفی آب های ساحلی نوار جنوبی دریای خزر در استان گیلان و تعیین شاخص های بهداشت محیط در طرح های ساحلی آن منطقه در سال های 1389-1388. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. دوره 22، شماره 88، صفحات 41 تا 52.
5
دستورالعمل پایش کیفیت آب های سطحی (جاری). 1388. نشریه شماره 522، معاونت نظارت راهبردی، دفترنظام فنی اجرایی، صفحات 21 تا 22.
6
شهریاری، ع.؛ کبیر، م. و گل فیروزی، ک.، 1387. وضعیت آلودگی میکروبی آب دریای خزر در خلیج گرگان. مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی گرگان. دوره 10، شماره 2، صفحات 69 تا 73.
7
طهماسبی، س.؛ افخمی، م. و تکدستان، ا.، 1390. تحلیل وضعیت فیزیکی، شیمیایی و میکروبی آب رودخانه گرگر با استفاده ازشاخص کیفیت آب. فصلنامه علمی پژوهشی علوم بهداشتی. سال 3، شماره 4، صفحات 23 تا 28.
8
صفری، ر. و یعقوب زاده، ز.، 1391. ارزیابی بیواندیکاتورهای میکروبی رودخانه شیرود در استان مازندران. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. دوره 22، شماره 98، صفحات 289 تا 299.
9
عرفان منش، م. و فیونی، م.، 1382. آلاینده های محیطی: آب، خاک و هوا. انتشارات ارکان اصفهان. صفحات 1 تا 24.
10
فئید، م.؛ بابایی، ه. و عابدینی، ع.، 1394. بررسی فاکتورهای میکروبیولوژی و فیزیکوشیمیایی در تالاب انزلی. فصلنامه علمی پژوهشی اکوبیولوژی تالاب. دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. دوره 7، شماره 25، صفحات 45 تا 54.
11
نادری، ش.؛ شریعت، م.؛ ندافی، ک.؛ واعظی، ف. و زراعتی، ح.، 1381. بررسی ارتباط بین میزان شاخص های بیولوژیک و پارامترهای کیفی آب در سیستم توزیع آب آشامیدنی مناطق روستایی استان قزوین. مجموعه مقالات ششمین همایش کشوری بهداشت محیط مازندران. دانشکده علوم پزشکی و بهداشت. صفحات 23 تا 25.
12
نصراله زاده ساروی، ح.؛ پرافکنده، ف.؛ فضلی، ح.؛ میرزایی، ر.؛ حسین پورحافرایی، م.؛ نصراله تبار، ع.؛ مخلوق، آ. و واحدی، ن.، 1389. مطالعه خصوصیات فیزیکوشیمیایی آب در دریاچه پشت سد آزاد سنندج به منظور فعالیت های شیلاتی. مجله علمی شیلات ایران. دوره 25، شماره 5، صفحات 143 تا 156.
13
یعقوب زاده، ز. و صفری، ر.، 1394. بررسی میزان آلودگی میکروبی آب های سطحی رودخانه هراز. مجله پژوهش های سلولی و مولکولی مجله زیست شناسی ایران. دوره 28، شماره 1، صفحات 136 تا 144.
14
هاتفی، م.، 1372.آلودگی میکروبی تالاب انزلی. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه تهران.
15
Ahip, M.V. and Puttaiah, E.T., 2006. Ecological characteristics of Vrishabhavathy River in Bangalore (India). Environmental geology. Vol. 49, pp: 1217-1222.
16
American Public Health Association (APHA). 2005. American Water Works Association (AWWA) & Water Environment Federation (WEF). Standard methods for the examination of water and wastewater. pp: 11- 22.
17
An, Y.J.; Kampbell, D.H. and Breidenbach, P.G., 2002. Escherichia coli and total coliforms in water and sediments at lake marinas. Environmental Pollution. Vol. 120, pp:771-778.
18
Baghel, V.S.; Gopal, K.; Dwivedi, S. and Tripathi, R.D., 2005. Bacterial indicators of fecal contamination of the Gangetic river system right at its source. Ecological Indicators. Vol. 5, pp: 49-56.
19
Blocksom, K.A.; Kurtenbach, J.P. and Klemm, D.J., 2002. Development and evaluation of the lake macroinvertebrate integrity index (LMII) for New Jersey lakes and reservoirs. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 77, pp: 311-333.
20
FAO/WHO. 2006. Committee on Food Additives. Technical Report Series no.776. Geneva. pp: 1-64.
21
Karimian, A.; Jafarzadeh, N.; Nabizaheh, R. and Afkhami, M., 2007. Zoning of water quality bases on WQI index, Zohreh river case study]. Int J Water Eng. Vol. 18, pp: 53-62.
22
Kim, G.T.; Choi, E. and Lee, D., 2005. Diffuse and point pollution impacts on the pathogen indicator organism level in the Geum River, Korea Science of the Total Environment. Vol. 350, pp: 94-105.
23
Sargaonkar, A. and Deshpande, V. 2003. Development of an overall index of pollution for surface water based on a general classification scheme in Indian context. Environmental monitoring and Assessment. Vol. 89, pp: 43-67.
24
Ramirez, N.F. and Solano, F., 2004. Physicochemical water quality indices-A Comparative Review. Revista Bifua J. Vol. 27, pp: 437-441.
25
Simeonov, V.; Stratis, J.A.; Samara, C.; Zachariadis, G.; Voutsa, D. and Anthemidis, A., 2003. Assessment of the surface water quality in Northern Greece Water Res. Vol. 37, pp: 4119-4124.
26
Raczynska, M., 2000. The problem of quality assessment of surface lotic waters as exemplified. 22 p.
27
Rashed, M.N., 2000. Biomarkers as indicator for water pollution with heavy metals in rivers seas and oceans. Faculty of science 81528 Aswan, south valley university, Egypt. pp:19-22.
28
WHO. 2004. World Health Organization, Guidelines for drinking- water quality, 3rd Edition, World Health Organization (WHO) Geneva. pp: 1-9.
29
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی الگوی پراکنش فصلی و تنوع زیستی جوامع درشت بیمهرگان کفزی در رودخانه آجی سو (استان گلستان)
جوامع بنتیک به عنوان شاخص زیستی در اکوسیستم های آبی مطرح می باشند. هدف از مطالعـه حاضـر، ارزیابی زیستی رودخانه آجیسو براساس ساختار جوامع درشت بیمهرگان کفزی بود. نمونه های کفزی به صورت فصلی از چهار ایستگاه (با 3 تکرار) به مدت یک سال با استفاده از نمونه بردار سوربر با سطح پوشش 30×30 سانتی متر جمع آوری شدند. در مجموع تعداد 1106 نمونه از موجودات کفزی شناسایی شدند که بیش ترین فراوانی به ترتیب مربوط به رده دوبالان و یک روزه ها در فصل پاییز بود درحالی که سایر گروه ها فراوانی ناچیزی داشتند. بیش ترین پراکنش درشت بیمهرگان کفزی در ایستگاه های 2 (37 درصد) و 3 (29 درصد) به دست آمد. مقیاس گذاری چند بعدی (MDS) و نمودار خوشه بندی به دلیل فراوانی راسته Diptera، Oligocheta و Ephemeroptera در ایستگاه های ۲، ۳ و ۴ فصل پاییز و تابستان، درشت بیمهرگان کفزی ۳ گروه مجزا از یکدیگر نشان داند. شاخص تنوع (شانون– وینر)، شاخص غالبیت (سیمپسون) و غنای گونه (مارگالف) مورد تجزیه و تحلیل آماری قرار گرفتند. نتایج نشان داد که بیش ترین شاخص تنوع (0/16± 1/36)، شاخص غالبیت (0/03± 0/77) و غنای گونه (0/21±1/37) در فصل پاییز بود، درحالی که کمترین مقدار در فصل گرم (تابستان) به دست آمد. همبستگی معنی داری بین شاخص های مختلف زیستی و برخی از پارامترهای آب ازجمله دما، اکسیژن محلول، شوری، هدایت الکتریکی و کل مواد جامد محلول وجود دارد. به طورکلی مشخص گردید که حشرات آبزی، جمعیت غالب درشت بیمهرگان کفزی رودخانه آجی سو را تشکیل می دهند. درشت بیمهرگان کفزی در فصل پاییز بیش ترین فروانی و تنوع زیستی را به خود اختصاص دادند.
http://www.aejournal.ir/article_95501_fba78d60ad2d25aef36db79e3662d6f2.pdf
2019-07-23
361
370
ماکروبنتوزها
ترکیب جمعیت
رودخانه آجیسو
شاخص های بیولوژیکی
مریم
علی زاده
alizadeh.shill89@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
سید عباس
حسینی
seyedabbas_hosseini@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
حجت الله
جعفریان
hojat.jafaryan@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
رسول
قربانی
ghorbani.rasoul@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
محمد
قلی زاده
gholizade_mohammad@yahoo.com
5
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، ع.؛ فتحی، پ.؛ قدرتی، ف.؛ نادری جلودار، م. و پیرعلی زفره ئی، ا.ر.، 1396. ارزیابی کیفیت آب رودخانه تجن با استفاده از شاخصهای کیفی و زیستی. مجله علمی شیلات ایران. جلد ۲۶، شماره ۵، صفحات 139 تا 151.
1
ابراهیمی درچه، ع.؛ محبوبی صوفیانی، ن. و کیوانی، ی.، 1387. نوسانات فصلی جمعیت درشت کفزیان رودخانه زاینده رود (از اصفهان تا ورزنه) با توجه به جنس بستر. مجله منابع طبیعی ایران. دوره 3، شماره 6، صفحات 665 تا 680.
2
احمدی، م.ر. و نفیسی، م.، 1380. شناسایی موجودات شاخص بیمهره آبهای جاری. انتشارات خیبر. 240 صفحه.
3
اکبری، پ. و ابراهیمی، ع.، 1389. شناسایی و تعیین توده زنده فون بنتیک رودخانه زاینده رود (استان اصفهان). مجله زیست شناسی ایران. دوره 5، شماره 23، صفحات 743 تا 751.
4
باقری توانی، م.؛ نوروزی، م. و فریدی، ش.، 1394. بررسی اثرات پساب کارخانه شن و ماسه برروی شاخص های زیستی، محیطی و بوم شناختی رودخانه تیروم (استان مازندران). مجله پژوهش های جانوری. دوره 28، شماره 1، صفحات 9 تا 20.
5
جرجانی، س.؛ قلیچی، ا.؛ اکرمی، ر. و خیرآبادی، و.، 1389. بررسی فراوانی، تنوع، غالبیت و غنای ماکروبنتوزهای نهر مادرسوی پارک ملی گلستان. مجله علوم زیستی. سال 4، صفحات 35 تا 54.
6
حفار، م.، 1389. ارزیابی زیستی رودخانه کر (استان فارس) در فصول مختلف با استفاده از ساختار جمعیتی ماکروبنتوز. مجله آبزیان و شیلات. دوره 1، شماره 2، صفحات 21 تا 34.
7
خسروانی، ش.؛ محمدی زاده، ف. و یحیوی، م.، 1393. ارزیابی زیستی رودخانه حاجی آباد (استان هرمزگان) با استفاده از ساختار جمعیت ماکروبنتوز. مجله بوم شناسی آبزیان. سال 4، جلد 1، صفحات 35 تا 43.
8
شکری ساروی، م.؛ احمدی، م.ر.؛ رحمانی، ح. و کامرانی، ا.، 1393. ارزیابی کیفیت آب براساس شاخصهای زیستی هیلسنهوف، تنوع شانون- وینر و شاخصهای محیطی در رودخانه تجن. فصلنامه علمی- پژوهشی علوم و فنون شیلات. دوره 3، شماره 4، صفحات 43 تا 55.
9
فرهنگی، م. و تیموری یانسری، م.، 1391. شناسایی بزرگ بی مهرگان (بنتوز) رودخانه محمدآباد (استان گلستان). مجله محیط زیست جانوری. دوره 4، شماره 2، صفحات 51 تا 56.
10
قانع ساسان سرایی، ا.؛ احمدی، م.؛ اسماعیلی، ع. و میرزاجانی، ع.، 1385. ارزیابی زیستی رودخانه چافرود (استان گیلان) با استفاده از ساختار جمعیت ماکروبنتوز. مجله علوم فنون کشاورزی و منابع طبیعـی. سال 10، شماره 1، صفحات 247 تا 257.
11
ﮔﯿﻼﻧﯽ، ف.؛ ﻧﻮروزی، م. و ﻓﻐﺎﻧﯽ، ح.، 1392. ارزﯾﺎﺑﯽ ﻓﻮن ﻣﺎﮐﺮوﺑﻨﺘﻮزﻫﺎی رودﺧﺎﻧﻪ ﺗﺠﻦ در ﻣﺤﺪوده ﮐﺎرﺧﺎﻧﻪ ﭼﻮب و ﮐﺎﻏﺬ ﻣﺎزﻧﺪران، ﺳﺎری. مجله شیلات. ﺳﺎل 7، ﺷﻤﺎره 14. صفحات 37 تا 44.
12
نوروزی، م. و هاشمی، م.، 1395. با ارزیابی زیستی فون کفزیان رودخانه نور رود در منطقه بلده نور. فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری. سال 8، شماره 3، صفحات 175 تا 182.
13
یحیوی، م.، 1379. مطالعه ای از توان تولید بی مهرگان در رودخانه کرج، مجله آبزیان. دوره 8، شماره 79، صفحات 45 تا 49.
14
American Public Health Association (APHA). 1998. In: Clescert, L.; Greenberg, A. and Eaton, A., (Eds.), Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater. 20th edition. Washington, USA.
15
Aura, C.M.; Raburu, P.O. and Hermann, j., 2010. Macroinvertebrates’ community structure in Rivers Kipkaren and Sosiani, River Nzoia basin, Kenya. Journal of Ecology and The Natural Environment. Vol. 3, No. 2, pp: 39-46.
16
Azrina, M.Z.; Yap, C.K.; Rahim Ismail, A.; Ismail, A. and Tan, S.G., 2006. Anthropogenic impacts on the distribution and biodiversity of benthic macroinvertebrates and water quality of the Langat River, Peninsular Malaysia. Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 64, No. 3, pp: 337- 347.
17
Barbour, M.T.; Fridenburg, R.; Mccarron, E.; White, J.S. and Bastian, M.L., 1998. A framework for biological criteria for Florida Streams using benthic macroinvertebrates. Journal of North America Benthological Society. Vol. 15, No. 2, pp: 185- 211.
18
Bass, D., 1995. Species composition of aquatic macroinvertebrates and environmental conditions in Cucumber Creek. Proceedings-oklahoma Academy of Science. Vol. 75, pp: 39-44.
19
Bauer, W., 1980. Quality of water and evaluate, Verlag Paul Parey, Hamburg und. Berlin. 540 p.
20
Berger, E.; Haase, P.; Kuemmerlen, M.; Leps, M.; Schäfer, R.B. and Sundermann, A., 2017. Water Quality Variables andPollution Sources Shaping Stream Macroinvertebrate Communities. Science of the Total Environment. Vol. 1, No. 10, pp: 587-588.
21
Damanik-Ambarita, M.N.; Lock, K.; Boets, P.; Everaert, G.; Nguyen, T.H. T.; Forio, M.A.E. and Dominguez Granda, L., 2016. Ecological water quality analysis of the Guayas river basin (Ecuador) based on macroinvertebrates indices.Limnologica-Ecology and Management of Inland Waters. Vol. 57, pp: 27-59.
22
Jindal, R. and Sharma, C., 2011. Biomonitoring of pollution in river Sutlej. International journal of environmental sciences. Vol. 2, No. 2, pp: 863-872.
23
Krebs, C.J., 1994. Ecology the experimental analysis of distribution and abundance. 4 thed. Harper Collins. New York. pp: 200-240.
24
Leunda, P.M.; Oscoz, J.; Miranda, R. and Arino, A.H., 2009. Longitudinal and seasonal variation of the benthic macroinvertebrate community and biotic indices in an undisturbed Pyrenean river. Ecological Indicators. pp: 52-63.
25
Malloy, K.J.; Wade, D.; Janicki, A.; Grabe, S.A. and Nijbroek, R., 2007. Development of a benthic index to assess sediment quality in the Tampa Bay estuary. Marine Pollution Bulletin. Vol. 54, pp: 22- 31.
26
Margalef, R., 1951. Diversidad de especies en las comunidades naturales. Publicaciones del instituto de biologia aplicada. Vol. 6, pp: 59-72.
27
Mclusky, D.S., 1990. The estuarine ecosystem. Blackie, Glscow and London, 161-182. Jorgenson, S.F., Costanza, R., Fuliu, X.U. 2005. Handbook of ecological indicators for assessment of ecosystem health. CRC press. 439 p.
28
Mitra, A.; Banerjee, K. and Gangopadhyay, A., 2004. Introduction to marine plankton. Daya Publishing House. 104 p.
29
Omernik, J.M., 1987. Ecoregions of the conterminous United States. Annals of the Association of American Geographers. Vol. 77, pp: 118-125.
30
Parr, L.B. and Mason, C.F., 2003. Long-term trends in water quality and their impact on macroinvertebrate assemblages in eutrophic lowland rivers. Water Research. Vol. 37, pp: 2969-2979.
31
Rosenberg, D.M., 2004. Taxa tolerance values. Bulletin of the Entomological Society of Canada. Vol. 30, pp: 144-152.
32
Shannon, C.E. and Weaver, W., 1963. The Mathematical theory of communications. University of Illinois Press. Urbana. 117 p.
33
Sharma, R.C. and Rawat, J.S., 2009. Monitoring of aquatic macroinvertebrates as bioindicator for assessing the health of wetlands: A case study in the Central Himalayas, India. Ecological Indicators. Vol. 9, pp:118-128.
34
Stanford, J.A.; Lorang, M.S. and Hauer, F.R., 2005. The shifting habitat mosaic of river ecosystems. Verhandlungen der Internationalen Vereinigung für Theoretische und Angewandte Limnologie. Vol. 29, pp: 123-136.
35
Taylor, B.R., 2000. Technical evaluation on methods for bentic invertebrate's data analysis and Interpretation. AETE Project 2. 1. 3. prepared for Canada Canter for Mineral and Energy Technology. Ottawa, Ontario. 93 P.
36
Thompson, B. and Lowe, S., 2004. Assessment of macro benthos response to sediment contamination in the San Francisco estuary, California, USA. Environmental Toxicology and Chemistry. Vol. 23, pp: 2178- 2187.
37
Varnosfaderany, M.N.; Ebrahimi, E.; Mirghaffary, N. and Safyanian, A., 2010. Biological assessment of the Zayandeh Rud River, Iran, using benthic macro-invertebrates. Limnologica-Ecology and Management of Inland Waters. Vol. 40, pp: 226-232.
38
Walen, J.K., 2002. Assessment of stream habitat, fish, macroinvertebrates, sediment and water chemistry for eleven streams in Kentucky and Tennessee, Virginia Polytechnic Institute, CATT. 71 p.
39
Washington, H.G., 1984. Diversity, biotic and similarity indices: a review with special relevance to aquatic ecosystems. Water Research. Vol. 18, pp: 653-694.
40
Wilhm, J. and Land Dorris, T.C., 1968. Biological parameters for water quality criteria. Bio-Science. Vol. 18, pp: 477- 481.
41
Yokoyama, H.; Nishimura, A. and Inoue, M., 2007. Macrobenthos as biological indicators to assess the influence of aquacultures on Japanese coastal enviromental. Ecological and Genetic Implications of Aquaculture Activites. Vol. 6, pp: 407-423.
42
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی وضعیت تروفی دریاچه سد زاینده رود در فصول پاییز و زمستان (سال 1390)
وضعیت تروفی و روند تغییرات آن طی فصول پاییز و زمستان در دریاچه سد زاینده رود مورد بررسی قرارگرفت. نمونه برداری از مهر تا اسفند 1390 در 4مرحله (اواسط ماه های مهر، آذر، دی و اسفند) با فاصله زمانی 45 روز انجام شد. 9 ایستگاه نمونه برداری در سه منطقه (هر منطقه 3 ایستگاه) شامل: اول (دهانه ورودی رودخانه به دریاچه)، دوم (مجاور دهکده تفریحی چادگان) و سوم (نزدیک به تاج سد) انتخاب شد. نمونه برداری از عمق 30 سانتی متر آب با بطری نمونه بردار نانسن انجام شد. دامنه پارامترهای عمق رویت سکشی دیسک 4/30-1/0 متر، فسفات کل 11/57-0/01، نیتروژن کل 2/20-0/20 و میزان کلروفیل a 8/84-0 میلی گرم در لیتر اندازه گیری شد. مقدار شاخصTSI ، Trophic State Index) در 4 مرحله مذکور براساس پارامتر فسفات کل به ترتیب برابر 25/22، 33/37، 29/80 و 31/02 و براساس کلروفیل a برابر 44/82، 31/28، 32/37 و 35/14 به دست آمد. درحالی که میزان این شاخص براساس عمق رویت سکشی در مراحل نمونه برداری به ترتیب 40/83، 42/42، 50/34 و 48/92 را نشان داد. تاثیرپذیری زیاد کلروفیل a از میزان فسفرحاکی از آن بود که این عنصر نقش موثری در رشد جلبک ها دارد درحالی که عمق رویت سکشی متاثر از ذرات سیلت حاصل از آبشویی زمین های اطراف در اثر بارندگی بود. میانگین TSI در همه مراحل نمونه برداری در محدوده 38/3-36/5 قرار داشت که نشان دهنده وضعیت الیگوتروف دریاچه سد زاینده رود در فصول پاییز وزمستان بود. علاوه بر این براساس مقدار کلروفیل a وفسفر کل این دریاچه در وضعیت الیگوتروف و براساس عمق رویت صفحه سکشی در وضعیت مزوتروف قرار گرفت.
http://www.aejournal.ir/article_95502_b6b333e706eb0b8f4c852d0798119d8f.pdf
2019-07-23
371
378
دریاچه سد زاینده رود
شاخص TSI
وضعیت تروفی
نرگس
رجایی
rajaee_n@of.iut.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
عیسی
ابراهیمی
e_ebrahimi@iut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
LEAD_AUTHOR
نصرالله
محبوبی صوفیانی
soofiani@cc.iut.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
امیدوار
فرهادیان
o.farhadian@cc.iut.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
اسماعیلی افق، ع.، 1390. ارزیابی شرایط تروفی تالاب چغاخور. پایان نامه کارشناسی ارشد بوم شناسی آبزیان شیلاتی دانشگاه صنعتی اصفهان، دانشکده منابع طبیعی. 98 صفحه.
1
بانی، ع.، 1375. بررسی ترکیب فیتوپلانکتونی حاصل از انواع کودها در استخرهای پرورش ماهیان گرم آبی. پایان نامه کارشناسی ارشد. 112 صفحه .
2
بونی، ا.د.، 1379. فیتوپلانکتون، ترجمه:رحیمی بشر، م.انتشارات سبز، رشت. 218 صفحه.
3
خلجی، م.؛ ابراهیمی، ع.؛ هاشمی نژاد، ه.؛ متقی، ا. و اسداله، س.، 1395. ارزیابی کیفیت آب دریاچه سد زاینده رود با استفاده از شاخص WQI مجله شیلات. سال 25، شماره 5، صفحات 51 تا 63..
4
سمائی، م.؛ مرتضوی، ب.؛ ابراهیمی، ع. و شاهسونی، ا.، 1389. استفاده ازرویکرد پویایی سیستم جهت مدلسازی اوتریفیکاسیون در دریاچه های مصنوعی. مجله تحقیقات نظام سلامت. سا ل 6، شماره 2، صفحات 3 تا 13.
5
شرکت سهامی آب منطقه ای اصفهان. 1396. سد زاینده رود، http://www.esrw.ir/SC.php?type= static&id=130. تاریخ دسترسی: 14/1/1396.
6
موسوی ندوشن، ر.؛ فاطمی، م.؛ اسماعیلی، ع. و وثوقی، غ.، 1387. تعیین وضعیت تروفی و پتانسیل ماهی در دریاچه چغاخور. مجله شیلات. سال 2، شماره 2، صفحات 71 تا 75.
7
نبوی جلودار، ع.، 1388. اثرات ازت و فسفر کل به عنوان مواد مغذی بر میزان کلروفیلa با هدف تعیین وضعیت تروفی مطالعه موردی: مخزن سد گاوشان استان کردستان. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده مرتع و آبخیزدازی و شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان.
8
APHA. 1992. Standard Methods for the Examination of Water and Waste Water, 18th Edition. American Public Health Association, Washington, D.C. Vol. 21.
9
Boynton, W.R.; Kemp, W.M. and Keefe, C.W., 1982. A comparative analysis of nutrients and other factors influencing estuarine phytoplankton production. Academic Press London, England. pp: 69-90.
10
Boyd, C.E., 1971. The limnological role of aquatic macrophytes and their relationship to reservoir management. Special Publication of the American Fish Society. Vol. 8, pp: 129-35.
11
Carlson, R.E., 1977. A trophic state index for lakes. Limnology and Oceanography. Vol. 22, pp: 361-369.
12
Coelho, S.; Gamito, S. and Pe´rez-Ruzafa, A., 2007. Trophic state of Foz de Almargem coastal lagoon (Algarve, South Portugal) based on the water quality and the phytoplankton community. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 71, No. 1, pp: 218-231.
13
Hodgkiss, I.J. and Lu, S.H., 2004. The effects of nutrients and their ratios on phytoplankton aboundance in Junk Bay, Hong Kong. Hydrobiologia. Vol. 512, No. 1-3, pp: 215-229.
14
Janjua, M.; Ahmad, T. and Akhtar, N., 2009. Limnology and trophic status of Shahpur Dam Reservoir, Pakistan. Journal of Animal and Plant Sciences. Vol. 19, No. 4, pp: 217-223.
15
Jorgensen, S.E. and Fath, B.D., 2008. Encyclopedia of Ecology, Elsevier B.V., Amsterdam, the Netherlands. 4122 p.
16
Onderka, M., 2007. Correlations between several environmental factors affecting the bloom events of cyanobacteria in Liptovska Mara reservoir (Slovakia). A Simple regression model. Ecological Modelling. Vol. 209, No. 2, pp: 412-416.
17
OECD. 1982. Eutrophication of waters. Monitoring assessment and control Technical Report Environment Directorate, OECD, Paris.
18
Rakocevic-Nedovic, J. and Hollert, H., 2005. Phytoplankton community and chlorophyll an as trophic state indices of Lake Skadar (Montenegro, Balkan). Environmental Science and Pollution Research. Vol. 12, No. 3, pp:146-152.
19
Richardson, C.J.; King, R.S.; Qian, S.S.; Vaithiyanathan, P.; Qualls, R.G. and Stow, C.A., 2007. Estimating ecological thresholds for phosphorus in the Everglades. Environmental Science and Technology. Vol. 41, No. 23, pp: 8084-8091.
20
Ryther, J.H. and Dunstan, W.M., 1971. Nitrogen, phosphorous and eutrophication in the coastal marine environment. Science. Vol. 171, No. 3975, pp: 1008-1013.
21
Strickland, J.D.H. and Parsons, T.R., 1968. A practical handbook sea water analysis. Bulletin of Fisheries Research Board of Canada. Vol. 167, pp: 1-331.
22
van Beusekom, J.E.E., 2018. Eutrophication. In: Salomon M., Markus T. (eds) Handbook on Marine Environment Protection. Springer, Cham. pp: 429-445.
23
Vascetta, M.; Kauppila, P. and Furman, E., 2008. Aggregate indicators in coastal policy making: potentials of the trophic index TRIX for sustainable considerations of eutrophication. Sustainability Development. Vol. 16, pp: 282-289.
24
Wang, Z.F.; Zhang, Q.; Lu, Y. and Lv, H.Y., 1996.The effects of nutrient and trace metals on the growth of the growth of the red tide organism Prorocentrum micans. Donghai Marine Sciences.Vol. 14, No. 3, pp: 33-38.
25