ORIGINAL_ARTICLE
تغییرات اقلیمی و اثرات آن بر زیستگاههای مطلوب یوزپلنگ آسیایی در مرکز ایران (مطالعه موردی: استان یزد)
زیرگونه به شدت درخطرانقراض یوزپلنگ آسیایی با جمعیتی کم تر از 40 فرد، فقط در زیستگاههای بیابانی فلات مرکزی کشور ایران باقی مانده است. زیستگاه های این گونه، که شامل زیستگاه های استان یزد و مناطق هم جوار است، از سال 1380 با بیش ترین کاهش جمعیت رو به رو بوده است. تغییرات اقلیمی و خشکسالی بر حیات وحش و زیستگاه های آن ها اثر مهمی دارد و در نابودی و انقراض آن ها بسیار اثرگذار است. از این رو در این پژوهش، طی یک دوره 14 ساله (1380 تا 1393)، به بررسی تغییرات اقلیمی زیستگاه های یوز در محدوده ای به مساحت 2/9 میلیون هکتار در استان یزد که مهم ترین مناطق انقراض محلی جمعیت یوز در ایران است، پرداخته شد. در این تحقیق ابتدا با روش بیش ترین بی نظمی، مدل سازی مطلوبیت زیستگاه یوزپلنگ انجام شد. سپس با استفاده از روش سریهای زمانی سنجنده مودیس تغییرات بیشینه درجه حرارت سطح زمین بررسی و با کمک داده ایستگاه های هواشناسی طی دوره مطالعه تغییرات مجموع بارش سالیانه بررسی گردید. ارزیابی تغییرات بیشینه درجه حرارت زمین در زیستگاه های مطلوب یوزپلنگ نشان میدهد که 24 درصد از سطح این منطقه، با افزایش میانگین درجه حرارت طی این دوره مواجه شده است. هم چنین کاهش مجموع بارش سالیانه در قسمتی از مناطق جنوبی منطقه مطالعاتی مشهود است. اما بررسیها برای شناسایی دلایل تغییرات زیستگاه یوزپلنگ آسیایی نشان داد که فاکتورهای تغییرات اقلیمی، شامل تغییرات بیشینه دمای سطح زمین و تغییرات مجموع بارش سالیانه، طی دوره مطالعه معنی دار نیست. از این رو به نظر میرسد بیش ترین دلیل تغییرات در زیستگاه های جنوبی منطقه مطالعاتی از زیستگاه های یوزپلنگ آسیایی طی دوره این پژوهش، عوامل غیراقلیمی است و عوامل انسانی به صورت مستقیم و غیرمستقیم بر این تغییرات اثر داشتهاند.
http://www.aejournal.ir/article_95802_5100f3433a90cfc61388889f65aece3a.pdf
2019-09-23
1
12
تغییرات اقلیمی
یوزپلنگ آسیایی
استان یزد
درجه حرارت زمین
بارش سالیانه
عوامل انسانی
علی
شمس
a.shams.env@gmail.com
1
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، سازمان حفاظت محیط زیست، کرج، ایران
AUTHOR
باقر
نظامی بلوچی
nezamibagher@gmail.com
2
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، سازمان حفاظت محیط زیست، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
بهزاد
رایگانی
behzad.rayegani@gmail.com
3
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، سازمان حفاظت محیط زیست، کرج، ایران
AUTHOR
بهمن
شمس اسفند اباد
bshams1357@gmail.com
4
گروه محیط زیست، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
AUTHOR
احمدی، م. و حیدری، ح.ر.، 1393. شناسایی و حفاظت اولویتهای نقاط زیستگاهی، ارزیابی تاثیر شبکه حفاظت و بررسی کریدورهای ارتباطی زیستگاه یوزپلنگ آسیایی در فلات مرکزی ایران. پروژه حفاظت از یوزپلنگ آسیایی. سازمان حفاظت محیط زیست. 87 صفحه
1
استان یزد. 1397. معرفی استان یزد. www.ostanyazd.ir.
2
انجمن یوزپلنگ ایرانی. 1396. گزارش پایش جمعیت یوزپلنگ آسیایی. www.wildlife.ir.
3
رضایی خوزانی، ع.؛ کابلی، م.؛ اشرفی، س. و اکبری، ح.، 1395. بررسی رژیم غذایی یوزپلنگ آسیایی (Acinonyx Jubatus Venaticus) با استفاده از روش تجزیه سرگین در منطقه حفاظت شده کوه بافق. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 8، شماره 2، صفحات 1 تا 8.
4
رضایی، م. و معماریان، ه.، 1394. کاربرد سری های زمانی بارش و نمایه های آماری اقلیمی در پیش بینی خشکسالی به کمک شبکه CANFIS (مطالعه موردی: بیرجند- خراسان جنوبی). مجله خشک بوم. دوره 5، شماره 2، صفحات 51 تا 67.
5
زمانی، ن. و قندالی، م.، 1396. مدل سازی و بررسی متغیرهای زیستگاهی تاثیرگذار بر پراکنش یوزپلنگ ایرانی (Acinonyx Jubatus Venaticus) در پناهگاه حیات وحش نایبندان، با روش تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی (ENFA). فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 3، صفحات 9 تا 16.
6
سرهنگزاده، ج.؛ اکبری، ح.؛ موسوی، س.ج. و پورچیت ساز، آ.، 1392. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه یوزپلنگ آسیایی در پناهگاه حیات وحش دره انجیر استان یزد. خشک بوم. دوره 3، شماره 2، صفحات 40 تا50.
7
شمس اسفندآباد، ب.، 1393. ارزیابی مطلوبیت زیستگاه یوزپلنگ آسیایی در ایران. پروژه حفاظت از یوزپلنگ آسیایی. سازمان حفاظت محیط زیست. 173 صفحه.
8
عباس زاده تهرانی، ن.، و صابری، ن.، 1392. ارزیابی الگوی تغییرات فصلی پوشش اراضی با تحلیل دادههای سنجش از دوری. سومین کنفرانس برنامه ریزی و مدیریت محیط زیست، تهران. 8 صفحه.
9
کرمانی، ف.؛ رایگانی، ب.؛ نظامی بلوچی، ب.؛ گشتاسب، ح.؛ خسروی، ح. و حیدری، ح.، 1396. ارزیابی شاخصهای محیط زیستی در انتخاب زیستگاه یوزپلنگ آسیایی (Acinonyx jubatus venaticus Griffith, 1281) به کمک دادههای سری زمانی دورسنجی (مطالعه موردی: مجموعه حفاظتی توران)، فصلنامه علمی پژوهشی علوم جانوری محیط زیست. سال 9، شماره 1، صفحات 1 تا 12.
10
مرادی، ف.؛ مختاری، م.ح. و سرکارگراردکانی، ع.، 1392. مقایسه تکنیک های کشف تغییرات کاربری اراضی مناطق شهری و ارایه مدل بهینه ارزیابی تغییرات با استفاده ازسنجش از دور و gis. کنفرانس بین المللی عمران، معماری و توسعه پایدار شهری. 13 صفحه.
11
مروتی،م.؛ کابلی، م.؛ پناهنده، م.؛ سرباز، م. و احمدیان، ش.، 1396. مدل سازی زیستگاه یوزپلنگ آسیایی (Acinonyx Jubatus Venaticus) تحت تاثیر تغییرات اقلیمی در ایران با استفاده از نرم افزار MaxEnt. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 1، صفحات 13 تا 20.
12
موسوی، س.ع.؛ فرح پور، م.؛ شکری، م.؛ سلیمانی، ک. و گودرزی، م.، 1385. بررسی روند تغییرات انبوهی پوشش گیاهی در قسمتی از حوضه سد لار در یک دوره 25 ساله با استفاده تلفیقی از GIS وRS. فصلنامه تحقیقات مرتع و بیابان ایران. دوره 13، شماره 3، صفحات 186 تا 200.
13
نظامی بلوچی، ب.، 1396. اکولوژی و وضعیت یوزپلنگ آسیایی در ایران. انتشارات جهاد دانشگاهی. 93 صفحه.
14
نوحی، ک. و عسگری، ا.، 1384. مطالعه خشکسالی و دوره های برگشت ترسالی ها و خشکسالی ها در منطقه قم. مجله خشکی و خشکسالی کشاورزی. شماره 15، صفحات 1 تا 17.
15
همامی، م.؛ اسماعیلی، س. و سفیانیان، ع.، 1394. پیشبینی پراکنش یوزپلنگ آسیایی، پلنگ ایرانی و خرس قهوهای در پاسخ به متغیرهای محیطی در استان اصفهان. بوم شناسی کاربردی. دوره 4، شماره 13، صفحات 63 تا 51.
16
Ahmadi, M.; Nezami Balouchi, B.; Jowkar, H.; Hemami, M. R.; Fadakar, D.; Malakouti‐Khah, S. and Ostrowski, S., 2017. Combining landscape suitability and habitat connectivity to conserve the last surviving population of cheetah in Asia. Diversity and Distributions. Vol. 23, No. 6, pp: 592-603.
17
Andresen, L.; Everatt, K.T. and Somers, M.J., 2014. Use of site occupancy models for targeted monitoring of the cheetah. Journal of Zoology. Vol. 292, No. 3, pp: 212-220.
18
Baugh, W.M. and Groeneveld, D.P., 2006. Broadband vegetation index performance evaluated for a low‐cover environment. International Journal of Remote Sensing. Vol. 27, No. 21, pp: 4715-4730.
19
Bissett, C. and Bernard, R.T.F., 2007. Habitat selection and feeding ecology of the cheetah (Acinonyx jubatus) in thicket vegetation: is the cheetah a savanna specialist? Journal of Zoology. Vol. 271, No. 3, pp: 310-317.
20
Boast, L.K., 2014. Exploring the causes of and mitigation options for human-predator conflict on game ranches in Botswana: How is coexistence possible? Thesis presented for the degree of Doctor of Philosophy in the Department of Zoology University of Cape Town. 172 p.
21
Broomhall, L.S.; Mills, M.G.L. and Du Toit, J.T., 2003. Home range and habitat use by cheetahs (Acinonyx jubatus) in the Kruger National Park. Journal of Zoology. Vol. 26, No. 2, pp: 119-128.
22
Cao, R.; Jiang, W.; Yuan, L.; Wang, W.; Lv, Z. and Chen, Z., 2014. Inter-annual variations in vegetation and their response to climatic factors in the upper catchments of the Yellow River from 2000 to 2010. Journal of Geographical Sciences. Vol. 24, No. 6, pp: 963-979.
23
Caro, T., 1994. Cheetahs of the Serengeti Plains: group living in an asocial species. University of Chicago Press. 197 p.
24
Ceccato, P.; Vancutsem, C. and Temimi, M., 2010. Monitoring air and land surface temperatures from remotely sensed data for climate-human health applications. In Geoscience and Remote Sensing Symposium (IGARSS), 2010 IEEE International. pp: 178-180. IEEE.
25
Conservation of Asian Cheetah Project. 2008. Performance Report and Achievements. Department of Environment. 213 p.
26
Conservation of Asian Cheetah Project. 2010. Performance Report and Achievements. Department of Environment. 254 p.
27
Farhadinia, M.S.; Akbari, H.; Mousavi, S.J.; Eslami, M.; Azizi, M.; Shokouhi, J. and Hosseini-Zavarei, F., 2013. Exceptionally long movements of the Asiatic cheetah Acinonyx jubatus venaticus across multiple arid reserves in central Iran. Oryx. Vol. 47, pp: 427-430.
28
Farhadinia, M.S.; Gholikhani, N.; Behnoud, P.; Hobeali, K.; Taktehrani, A.; Hosseini-Zavarei, F. and Hunter, L.T., 2016. Wandering the barren deserts of Iran: Illuminating high mobility of the Asiatic cheetah with sparse data. Journal of Arid Environments. Vol. 134, pp: 145-149.
29
Firouz, E., 2005. The complete fauna of Iran. IB Tauris. 239 p.
30
Forkel, M.; Carvalhais, N.; Verbesselt, J.; Mahecha, M.D.; Neigh, C.S. and Reichstein, M., 2013. Trend change detection in NDVI time series: Effects of inter-annual variability and methodology. Remote Sensing. Vol. 5, No. 5, pp: 2113-2144.
31
Glick, P.; Stein, B.A. and Edelson, N.A., 2010. Scanning the conservation horizon: a guide to climate change vulnerability assessment. National Wildlife Federation, Washington DC. 172 p.
32
Guttman, N.B., 1998. Comparing the Palmer drought index and the standardized precipitation index. JAWRA Journal of the American Water Resources Association, Vol. 34, pp: 113-121.
33
Hanski, I. and Ovaskainen, O., 2000. The meta population capacity of a fragmented landscape. Nature. Vol. 404, pp: 679-755.
34
Hayward, M.W.; Hofmeyr, M.; O'Brien, J. and Kerley, G.I.H., 2006. Prey preferences of the cheetah (Acinonyx jubatus) (Felidae: Carnivora): morphological limitations or the need to capture rapidly consumable prey before kleptoparasites arrive. Journal of Zoology. Vol. 270, No. 4, pp: 615-627.
35
Houghton, J.T., 2001. Appendix I–Glossary. Climate change 2001: the scientific basis: contribution of Working Group I to the Third Assessment Report of the Intergovernmental Panel on Climate Change. 149 p.
36
Hunter, J.S.; Durant, S.M. and Caro, T.M., 2007. To flee or not to flee: predator avoidance by cheetahs at kills. Behavioral Ecology and Sociobiology. Vol. 61, No. 7, pp: 1033-1042.
37
IUCN. 2014. IUCN Red List of Threatened Species. Accessed: 22 February 2014. www.iucnredlist.org.
38
Jin, M.; Dickinson, R.E. and Zhang, D.A., 2005. The footprint of urban areas on global climate as characterized by MODIS. Journal of climate. Vol. 18, No. 10, pp: 1551-1565.
39
Jourabchian, A.R. and Farhadinia, M.S., 2008. Final report on Conservation of the Asiatic cheetah, its Natural Habitats and Associated Biota in Iran. Project Number IRA/00 G. Vol. 35, 171 p.
40
Karami, M., 1992. Cheetah distribution in Khorasan Province, Iran. Cat News. No. 16, 4 p.
41
Kay, A.L.; Davies, H.N.; Bell, V.A. and Jones, R.G., 2009. Comparison of uncertainty sources for climate change impacts: flood frequency in England. Climatic Change. Vol. 92, No. 1-2, pp: 41-63.
42
Kendall, M., 1975. Multivariate analysis. Charles Griffin.
43
Kogan, F.N., 1995. Application of vegetation index and brightness temperature for drought detection. Advances in Space Research. Vol. 15, No. 11, pp: 91-100.
44
Kundzewicz, Z. and Robson, A., 2000. Detecting trend and other changes in hydrological data. World Meteorological Organization. 234 p.
45
Liu, W.T. and Kogan, F.N., 1996. Monitoring regional drought using the vegetation condition index. International Journal of Remote Sensing. Vol. 17, No. 4, pp: 2761-2782.
46
Lozano-Garcia, D.F.; Fernandez, R.N.; Gallo, K.P. and Johannsen, C.J., 1995. Monitoring the 1988 severe drought in Indiana, USA using AVHRR data. International Journal of Remote Sensing. Vol. 16, No. 7, pp: 1327-1340.
47
Mallon, D.P., 2007. Cheetahs in Central Asia: a historical summary. Cat news. No. 46, pp: 4-7.
48
Marker, L.; Dickman, A. and Schumann, M., 2005. Using livestock guarding dogs as a conflict resolution strategy on Namibian farms. Carnivore Damage Prevention News. pp: 28-32.
49
Mech, S G. and Hallett, J.G., 2001. Evaluating the effectiveness of corridors: a genetic approach. Conservation Biology. Vol. 15, No. 2, pp: 467-474.
50
Metzger, M.J.; Schröter, D.; Leemans, R. and Cramer, W., 2008. A spatially explicit and quantitative vulnerability assessment of ecosystem service change in Europe. Regional Environmental Change. Vol. 8, No. 3, pp: 91-107.
51
Mills, M.G.L. and Harvey, M., 2001. African predators. Smithsonian Institution Press. 186 p.
52
Moran, M.S.; Clarke, T.R.; Inoue, Y. and Vidal, A., 1994. Estimating crop water deficit using the relation between surface-air temperature and spectral vegetation index. Remote sensing of Environment. Vol. 49, No. 3, pp: 246-263.
53
Nowell, K. and Jackson, P., 1996. Wild cats: status survey and conservation action plan. Gland: IUCN. Vol. 382, 177 p.
54
Ordiz, A.; Bischof, R. and Swenson, J.E., 2013. Saving large carnivores, but losing the apex predator. Biological Conservation. Vol. 168, pp: 128-133.
55
Pettorelli, N.; Bro-Jørgensen, J.; Durant, S.M.; Blackburn, T. and Carbone, C., 2009. Energy availability and density estimates in African ungulates. The American Naturalist. Vol. 173, No. 5, pp: 698-704.
56
Rabinowitz, A. and Zeller, K.A., 2010. A range-wide model of landscape connectivity and conservation for the jaguar, Panthera onca. Biological conservation. Vol. 143, No. 4, pp: 939-945.
57
Sen, P.K., 1968. Estimates of the regression coefficient based on Kendall's tau. Journal of the American statistical association. Vol. 63, No. 324, pp: 1379-1389.
58
Solomon, S., 2007. The physical science basis: Contribution of Working Group I to the fourth assessment report of the Intergovernmental Panel on Climate Change. Intergovernmental Panel on Climate Change (IPCC), Climate change. 996 p.
59
Teachers, I., 1995. Technology: Making the Connection. In Washington: Office of Technology Assessment, Congress of the United States/US Government Printing Office. 231 p.
60
Thiel, H., 1950. A rank-invariant method of linear and polynomial regression analysis, Part 3. In Proceedings of Koninalijke Nederlandse Akademie van Weinenschatpen A. Vol. 53, pp: 1397-1412.
61
Walter, C.; McBratney, A.B.; Douaoui, A. and Minasny, B., 2001. Spatial prediction of topsoil salinity in the Chelif Valley, Algeria, using local ordinary kriging with local variograms versus whole-area variogram. Soil Research. Vol. 39, pp: 259-272.
62
Wang, G.X.; Li, Q.; Cheng, G.D. and Shen, Y.P., 2001. Climate change and its impact on the eco environment in the source regions of the Yangtze and Yellow Rivers in recent 40 years. Journal of Glaciology and Geocryology. Vol. 23, No. 4, pp: 346-352.
63
Wang, P.X. and Wei, Y.M., 1998. Research, Demonstration and Extension of Sustainable Farming Systems for Rainfed Agriculture. 161 p.
64
Warren, D.L.; Glor, R.E. and Turelli, M., 2010. ENMTools: a toolbox for comparative studies of environmental niche models. Ecography. Vol. 33, No. 3, pp: 607-611.
65
Weng, Q.; Fu, P. and Gao, F., 2014. Generating daily land surface temperature at Landsat resolution by fusing Landsat and MODIS data. Remote sensing of environment. Vol. 145, pp: 55-67.
66
Zar, J.H., 1999. Biostatistical analysis. Pearson Education India. 213 p.
67
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه ریخت شناسی استخوان های اصلی اندام حرکتی سینه ای، در کاراکال (Caracal caracal) و خدنگ (Herpestes edwardsii)
کاراکال و خدنگ هر دو گونه هایی از گوشت خواران هستند که در نواحی مختلفی از ایران زندگی می کنند. شکل شناسی استخوان های اندام حرکتی سینه ای نقش مهمی در وضعیت ایستایی و حرکتی بدن دارند و در گوشت خواران شکارچی به دلیل عاملیت در گرفتن طعمه اهمیت مضاعفی می یابند. هدف از مطالعه حاضر، بررسی مورفولوژیکی استخوان های کتف، بازو، زند پیشین و زند پسین در این دو گونه می باشد. ثبت این یافته ها به تمایز گونه ای، طب حیونات وحشی و رصد فرآیندهای درمانی و حفظ جمعیت گونه های فوق کمک شایانی می کند. جهت انجام مطالعه حاضر لاشه یک قلاده کاراکال و یک قلاده خدنگ بالغ به سالن تشریح منتقل گردید. پس از انجام مراحل آماده سازی و بررسی های مورفولوژیکی استخوان ها انجام و تصاویر لازم تهیه گردید. وجود زوائد قلابی و فوق قلابی در استخوان کتف هر دو حیوان دیده شد. هم چنین در استخوان بازوی خدنگ وجود دو سوراخ در انتهای پائینی قابل توجه بود. از این مطالعه، می توان این گونه استنتاج کرد که بیش ترین تفاوت ها در استخوان کتف دیده می شود. این استخوان در خدنگ به سگ و در کاراکال بیش تر به گربه اهلی شباهت داشت. در استخوان بازو مهم ترین تفاوت ها در میان گوشت خواران، در ناحیه پائینی استخوان است. هم چنین بیش ترین شباهت های مورفولوژیک، در استخوان های زند پیشین و زند پسین دیده شد.
http://www.aejournal.ir/article_95807_9bb76c1f6df709f3b0318379678e14a5.pdf
2019-09-23
13
20
کاراکال
خدنگ
استخوان شناسی
اندام حرکتی سینه ای
بابک
رسولی
babrs32@yahoo.com
1
گروه آناتومی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه سمنان، سمنان، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد حسن
یوسفی
myousefi@semnan.ac.ir
2
گروه آناتومی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه سمنان، سمنان، ایران
AUTHOR
غلامرضا
بهنام
ghbehnam@gmail.com
3
مرکز تحقیقات محیط زیست استان سمنان، ایران
AUTHOR
ریحانه
هوشمند عباسی
reyhaneh.hooshmandabbasi@uzh.ch
4
گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
حسین
در علی نبی
h.dorali@yahoo.com
5
گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، م.؛ حسینی زوارئی، ف.؛ رجب زاده، م.؛ غفاری، ه.؛ قلیچ پور، م.؛ مبارکی، ا. و نظامی بلوچی، ب.، 1390. فرهنگنامه حیات وحش ایران. چاپ سوم. نشر طلائی تهران. صفحات 48 تا 86.
1
عبدلی، ا.؛ احمدزاده، ف.؛ مصطفوی، ح.؛ دلشب، ح.؛ حسن زاده کیابی، ب.؛ رسولی، پ. و موسوی، ب.، ۱۳۸۸. اطلس حیات وحش استان بوشهر. انتشارات معارف. صفحات 58 تا 101.
2
Boyd, J.S.; Paterson, C. and May, A.H., 2001. Color Atlas of Clinical Anatomy of Dog and Cat. 2nd Ed. Publ. Mosby Wolfe, Glasgow, UK. pp: 62-87.
3
Dyce, K.M.; Sack, W.O. and Wensing, C.J.G., 2018. Textbook of Veterinary Anatomy.5thEd. Philadelphia, Pa; London: Saunders. pp: 479-490.
4
Evans, H.E. and De Lahunta, A., 2016. Guide to the Dissection of the Dog.7th Ed. Elsevier Health Sciences. pp: 213-250.
5
Getty, R., 1977. Sisson and Grossman’s the Anatomy of the Domestic Animals-II. 5th ed. Publ., the Macmillan Co. of India Ltd. pp: 1427-1503.
6
Janis, C.M. and Figueirido, B., 2014. Forelimb Anatomy and the Discrimination of the Predatory Behavior of Carnivorous Mammals: The Thylacine as a Case Study. Journal of Morph. Vol. 1, pp: 1-18.
7
Konig, H.E. and Leibich, H.G., 2009. Veterinary Anatomy of Domestic Mammals text book and color atlas, 3rd ed. Schluterschc. pp: 189-195.
8
Nzalak, J.O.; Eki, M.M.; Sulaiman, M.H.; Umosen, A.D.; Salami, S.O.; Maidawa, S.M. and Ibe, C.S., 2010. Gross Anatomical Studies of the Bones of the Thoracic Limbs of the Lion (Panthera leo). J. Vet. Anat. Vol. 2, pp: 65-71.
9
Sreeranjini, A.R.; Raj, I.V.; Ashok, N. and Harshan, K.R., 2008.Gross Anatomical Studies of the Scapula in Leopard (Panthera pardus) J. Vet. Anim.Sci. Vol. 39, pp: 47-48.
10
Tomar, M.P.S.; Taluja, J.S.; Vaish, R. and Shrivastav, A.B., 2014. Gross anatomical study on humerus of tiger (Panthera tigris). IJAR. Vol. 2, No. 3, pp: 1034-1040.
11
Tomar, M.P.S.; Taluja, J.S.; Vaish, R.; Shrivastav, A.B.; Shahi, A. and Sumbria, D., 2017. Gross anatomy of scapula in Tiger (Panthera tigris) Indian J. Anim. Res. Vol. 4, pp: 1-4.
12
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی مطلوبیت زیستگاه جبیر (Gazella bennettii) با استفاده از روش HEP (مطالعه موردی: منطقه حفاظت شده سنگ مس)
امروزه از آن جایی که رشد جمعیت، باعث تخریب زیستگاه های حیات وحش در سطح وسیع شده است لذا حفظ و گسترش زیستگاهها نقش به سزایی در حفظ حیات وحش و به تبع آن، تنوع زیستی دارد و با ارزیابی زیستگاه به راحتی می توان به کیفیت زیستگاه رسید. منطقه حفاظت شده سنگ مس، یکی از بهترین و امن ترین زیستگاههای جبیر در استان کرمان است. این پژوهش با هدف تعیین عوامل مؤثر برحضور جبیر با استفاده از روش HEP طی سال های 1395 لغایت 1396 برای فصول بهار (دوره برهآوری)، تابستان (دوره گرما و کم آبی) و پاییز (دوره جفت گیری) انجام گرفت. متغیر های عمده ای که برای ارزیابی زیستگاه گونه جبیر مورد استفاده قرارگرفتند عبارتند از: شیب، ارتفاع، گریزگاه، زی تودهگیاهی، فاصله تا منبع آب، دره های متوسط پربوته. ابتدا زیستگاه مدنظر به سه ایستگاه (کوهستان، تپه ماهور و دشت) تقسیم بندی، سپس با استفاده از روشHEP متغیرهای شاخص تعیین و رتبه دهی شدند. نتایج ارزیابی منطقه با استفاده از روش HEP نشان داد، زیستگاه تپه ماهور در فصل بهاره - تابستان با شاخص HSI، 0/89 نسبت به سایر قسمت ها از مطلوبیت بالاتری برخوردار است و از بین متغیرهای مورد استفاده، متغیر زی توده گیاهی در تمامی فصول برای هر دو ایستگاه، از رتبه بالاتری برخوردار بود که این نشان از غنی بودن منطقه برای تغذیه گونه می باشد. از نتایج این مطالعه می توان در اجرای اقدامات حفاظتی و مدیریتی جهت افزایش سطح زیستگاه های مطلوب در استان کرمان استفاده نمود.
http://www.aejournal.ir/article_94091_f345b13f80a5bb14dba9660548133c94.pdf
2019-09-23
21
28
ارزیابی زیستگاه
مدل HEP
گونه جبیر
منطقه حفاظت شده سنگ مس
مریم
مروتی
maryam_morovati147@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی، منابع طبیعی و کویرشناسی، دانشگاه اردکان، اردکان، ایران
LEAD_AUTHOR
مینا
بهنود
behnood1995@gmail.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی، منابع طبیعی و کویرشناسی، دانشگاه اردکان، اردکان، ایران
AUTHOR
فاطمه
بهادری امجز
fateme.bahadori95@gmail.com
3
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی، منابع طبیعی و کویرشناسی، دانشگاه اردکان، اردکان، ایران
AUTHOR
عیسی
عارف کیا
lvc147@yahoo.com
4
اداره حفاظت محیط زیست بم، بم، ایران
AUTHOR
شناسنامه منطقه حفاظت شده سنگ مس. 1396. اداره حفاظت محیط زیست شهرستان بم. 30 صفحه.
1
اکبری، ح.؛ وارسته مرادی، ح. و رضایی، ح.، 1393. بررسی رجحان و ترکیب غذایی جبیر (Gazella bennettii shikari) در فصل بهار در پناهگاه حیات وحش دره انجیر استان یزد. دوفصلنامه علمی- پژوهشی خشک بوم. دوره 4، شماره 2، صفحات 2 تا 4.
2
اکبری، ح.؛ حبیبی پور، ا. و موسوی، ج.، 1392. بررسی ترجیح زیستگاهی و اندازه گروه های جبیر (Gazella bennettii) در پناهگاه حیات وحش دره انجیر یزد. اکولوژی کاربردی. دوره 2، شماره 3، صفحات 81 تا 89.
3
پورقاسم، م.؛ سلمان ماهینی، ع.؛ رضوانی، م. و قلی پور، م.، 1394. مقایسه مدل های ارزیابی زیستگاه حیات وحش در ایران. کنفرانس بین المللی پژوهش های نوین در علوم کشاورزی و محیط زیست. کوالامپور، مالزی.
4
حسینی، م.؛ ریاضی، ب.؛ شمس اسفندآباد، ب. و نادری، م.،1396.ارزیابی مطلوبیت زیستگاه کل و بز (Capra aegagrus) در استان گلستان. فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 2، صفحات 9 تا 16.
5
خاکی صحنه، س.؛ علیزاده شعبانی، ا.؛ میرسنجری، م.؛ کابلی، م.؛ نوری، ز. و فتاحی، ب.، 1390. ارزیابی زیستگاه پایکای افغانی (Ochotona rufescens) با استفاده از روش های رگرسیون منطقی دوتایی و HEP(مطالعه موردی: منطقه حفاظت شده لشگردر، همدان). فصلنامه علمی- پژوهشی محیط زیست جانوری. دوره 3، شماره 3، صفحات 1 تا 10.
6
رمیاز، م.؛ نادری، س.؛ کرمی، پ. و بهنام، غ.، 1396. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه پاییزه و زمستانه گوسفند وحشی (Ovis orientalis) در منطقه حفاظت شده پرور براساس روش حداکثر آنتروپی بیشینه (MaxEnt). فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 2، صفحات 17 تا 24.
7
زارعی، ا.، 1387. ارزیابی زیستگاه جبیر (Gazella bennetii) در پارک ملی توران. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم تحقیقات تهران. 101صفحه.
8
ضیایی، ه.، 1387. راهنمای صحرایی پستانداران ایران. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. چاپ دوم. 426 صفحه.
9
قندالی، م.؛ علیزاده، ا.؛ کرمی، م. و کابلی، م.، 1393. ارزیابی زیستگاه گوسفند وحشی (Ovis orientalis) در پارک ملی کویر با استفاده از روش تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی. نشریه محیط زیست طبیعی، منابع طبیعی ایران. دوره 67، شماره 2، صفحات 185 تا 194.
10
کرمی، م.؛ ریاضی، ب. و کلانی، ن.، 1385. ارزیابی زیستگاه کفتار راه راه ایرانی (Hyaena hyaena hyaena) در پارک ملی خجیر و ارائه مدل مطلوبیت به کمک روش HEP. نشریه علوم محیطی. دوره 11، شماره 77 تا 86.
11
کریمیان، ع. و حسین جعفری، س.، 1394. انتخاب زیستگاه تابستانه و پاییزه آهوی ایرانی (Gazella subgutrrosa) براساس جوامع گیاهی (بررسی موردی: دشت کالمند استان یزد). فصلنامه علوم محیطی. دوره 13، شماره 3، صفحات 125 تا 133.
12
مکی، ت.؛ فاخران، س.؛ مرادی، ح.؛ ایروانی، م. و فرهمند، م.، 1391. ارزیابی اثرات بوم شناختی کنارگذر غرب اصفهان بر پناهگاه حیات وحش قمیشلو با استفاده از روشHEP . اکولوژی کاربردی. دوره 1، شماره 2، صفحات 39 تا 51.
13
وارسته مردای،ح.؛سلمان ماهینی، ع. و قلی پور، م.، 1394. ارزیابی زیستگاه حیات وحش. انتشارات دین گار. چاپ اول. 450 صفحه.
14
Canter, L.W. and Atkinson, S.F., 2011. Multiple uses of indicators and indices in cumulative effects assessment and management. Environmental Impact Assessment Review. Vol.31, pp: 491-501.
15
Chandrakant Gaikwad, M. and Shivaji Narwade, S.M., 2016. The status of Chinkara Gazella bennettii (Mammalia: Cetartiodactyla: Bovidae) at Mayureshwar Wildlife sanctuary, Supe, Baramati, Pune and a note on its current Distribution in the southwestern Region of the Deccan Plateau of Maharashtra, India. Journal of Threatened Taxa. Vol. 8, No. 3, pp: 8590-8595.
16
Dumax, N. and Rozan, A., 2011. Using an adapted HEP to assess environmental cost. Ecological Economics. Vol. 72, pp: 53-59.
17
Douglas, H.J.; Haseltine, S.D. and Cowardin, L.M., 1994.Wildlife habitat management on the northern prairie landscape.Landscape and Urban Planning. Vol.28, pp: 5-21.
18
Fukuda, S.H.; Tanakura, T.; Hiramatsu, K. and Harada, M., 2015.Assessment of spatial habitat heterogeneity by coupling data driven habitat suitability models with a 2D hydrodynamic model in small-scale streams.Ecological Informatics. Vol. 29, No. 2, pp :147-155.
19
Hightower, J.E.; Harris, J.E.; Raabe, J.K.; Brownell, P. and Drew, C.A., 2012. A Bayesian Spawning Habitat Suitability Model for American Shad in Southeastern United States Rivers. Journal of Fish and WildlifeManagement. Vol. 3, No. 2, pp: 184-198.
20
He, J.; Chun, L.J. and li, C.H., 2017.The evaluation for the impact of land use change on habitat quality: A joint contribution of cellular automata scenario simulation and habitat quality assessment model.Ecological Modelling. Vol. 366, No. 24, pp: 58-67.
21
Herzoga, F.; Luscher, G.; Arndorfer, M.; Bogers, M.; Balazs, K.; Bunced, R.G.H.; Dennis, P.; Falusi, E.; Friedel, J.K.; Geijzendorffer, I.R.; Gomiero, T.; Jeanneret, P.; Moreno, G.; Oschatzb, M.L.; Paoletti, M.G.; Sarthou, J.P.; Stoyanova, S.; Szerencsits, E.; Wolfrum, S.; Fjellstad, W. and Bailey, D., 2017. European farm scale habitat descriptors for the evaluation of biodiversity. Ecological Indicators. Vol.77, pp: 205-217.
22
Hindmarch, S.; Elliott, J.E., McCann, S. and Levesque, P., 2017. Habitat use by barn owls across a rural to urban gradient and an assessment of stressors including, habitat loss, rodenticide exposure and road mortality. Landscape and Urban Planning. Vol. 164, pp: 132-142.
23
Imam, E.; Kushwaha, S.P.S. and Singh, A., 2009. Evaluation of suitable tiger habitat in Chandoli National Park, India, using multiple logistic regression. Ecological Modelling. Vol.220, pp: 3621-3629.
24
Makki, T.; Fakheran, S.; Moradi, H.; Iravani, M. and Senn, J., 2013. Landscape scale impacts of transportation infrastructure on spatial dynamics of two vulnerable ungulate species in Ghamishloo Wildlife Refuge, Iran. Ecological Indicators. Vol.31, pp: 6-14.
25
Oliver,I.; Eldridge, D.G.; Nadolny, C.H. and Martin, W.K., 2014. What do site condition multi-metrics tell us about species biodiversity? Ecological Indicators. Vol. 38, pp: 262-271.
26
Ruter, S.; Matthies, S. and Zoch, L., 2017.Applicability of Modified Whittaker plots for habitat assessment in urban forests: Examples from Hannover, Germany.Urban Forestry & Urban Greening. Vol.21, pp: 116-128.
27
Yang, H.; Vina, A.; Tang, Y.; Zhang, J.; Wang, F.; Zhao, Z. and Liu, J., 2017. Range-wide evaluation of wildlife habitat change: A demonstration using Giant Pandas. Biological Conservation. Vol.213, pp: 203-209.
28
ORIGINAL_ARTICLE
اثر قوچ بر عملکرد رشد و شاخص های زیست سنجی برههای نر نژاد شال در استان قزوین
این پژوهش با هدف بررسی عملکرد رشد، اندازه های بدن و ابعاد دنبه برههای نر شال حاصل از آمیزش قوچ ها و میش های غیرخویشاوند در منطقه قزوین انجام شد. تعداد 200 رأس شیشک ماده 18 ماهه از یک گله 1000 رأسی انتخاب و به طور تصادفی به دو گروه 100 رأسی تقسیم شدند. گروه اول (شاهد) با قوچ های موجود در همان گله و گروه دوم (آزمایشی) با قوچهایی از گله دیگر آمیزش داده شدند. پس از زایش، از هرگروه 10 رأس بره نر برای اندازهگیری پارامترهای ابعاد بدن و دنبه انتخاب گردید. نتایج نشان داد میانگین محیط گردن (36/6 در مقابل 35/1 سانتی متر)، محیط بالای دنبه (40/4 در مقابل 37/1 سانتی متر) و طول وسط دنبه (15/1 در مقال 14 سانتی متر) در گروه آزمایشی به طور معنی داری بیش تر از گروه شاهد بود. اثر قوچ به ترتیب در گروه شاهد و آزمایشی بر میانگین وزن تولد (4/9 در مقابل 4/8 کیلوگرم)، وزنهای دو، چهار، شش و هشت ماهگی (45/1 در مقابل 43/2 کیلوگرم)، اضافه وزن نهایی (40/2 در مقابل 38/4 کیلوگرم)، ارتفاع جدوگاه، طول بدن، دورسینه، عرض کپل، طول مورب، ابعاد دنبه شامل طول در قسمت راست، چپ و شکاف، عرض در قسمت وسط و بالا، محیط در قسمت بالا، وسط و پایین، ضخامت در قسمت بالا، وسط و پایین و وزن دنبه (2/4 در مقابل 2/3 کیلوگرم)، از لحاظ آماری معنی دار نبود. به طورکلی می توان بیان نمود که استفاده از قوچ دیگر گله ها در برنامه جفتگیری، گرچه سبب افزایش ضخامت گردن و برخی صفات دنبه گردید ولی تأثیری بر عملکرد رشد بره های حاصل نداشت.
http://www.aejournal.ir/article_95934_ef4032f18161ea99da45f5a5290f953d.pdf
2019-09-23
29
34
گوسفند شال
فنوتیپ قوچ
عملکرد پروار
اندازه دنبه
نادر
پاپی
papinader4@gmail.com
1
موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
بیابانی، پ،؛ بیابانی، م.؛ هاشمی، ع،؛ مردانی، ک. و قادرزاده، م.، 1392. اثر جایگاه ژنتیکی عامل نکروز تومور آلفا بر صفات بیومتری در گوسفندان ماکویی. نشریه پژوهش های علوم دامی. جلد 32، شماره 4، صفحات 131 تا 139.
1
جواهری بارفروش، ه.؛ صادقی پناه، ح. و اسدزاده، ن.، 1393. افزایش بازده اقتصادی گوسفند شال با کنترل خویشاوندی در گله های کوچک. فصلنامه تحقیقات کاربردی در علوم دامی. شماره 19، صفحات 33 تا 42.
2
حسینی وردنجانی، س.م.؛ میرایی آشتیانی، س.ر.؛ پاکدل، ع. و مرادی شهربابک، ح.، 1393. انتخاب و ارزیابی پارامترها در تابعیت مؤلفه های اصلی و تابعیت خطی چندگانه برای پیشبینی وزن دنبه. نشریه علوم دامی (پژوهش و سازندگی)، شماره 104، صفحات 91 تا 100.
3
خالداری، م.، 1393. اصول پرورش گوسفند و بز. انتشارات دانشگاه تهران. 572 صفحه.
4
طالبی، م.ع.، 1391. انتخاب برای کاهش اندازه دنبه در گوسفندان لری بختیاری. مجله علوم دامی ایران، دوره 43، شماره 3، صفحات 401 تا 411.
5
کشاورزپور، م.؛ بحرینی بهزادی، م.ر. و محقق دولت آبادی، م.، 1396. تحلیل شجره و بررسی هم خونی در گوسفند نژاد لری بختیاری. نشریه پژوهش های علوم دامی ایران، جلد 9، شماره 3، صفحات 376 تا 386.
6
کیانزاد، م.ر.، 1377. بررسی امکان کاربرد تکنیک اولتراسوند و اندازه های بدن به منظور برآورد ترکیبات فیزیکی و شیمیایی لاشه گوسفندان زنده ایرانی در گله های اصلاحی. معاونت آموزش و تحقیقات وزارت جهاد سازندگی. مؤسسه تحقیقات علوم دامی کشور،210200000-75.
7
Al Jassim, R.A.M.; Brown, G.; Salman, E.D. andAbodabos, A., 2002. Effect of tail docking in Awassi lambs on metabolizable energy requirements and chemical composition of carcasses. Journal of Animal Science. Vol.75, pp: 359-366.
8
Analla, M.; Montilla, J.M. and Serradilla, J.M., 1998. Analyses of lamb weight and ewe litter size in various lines of Spanish Merino sheep. Small Ruminant Research. Vol. 29, pp: 255-259.
9
Ercanbrack, S.K. and Knight, A.D., 1991. Effects of inbreeding on reproduction and wool production of Rambouillet, Targhee, and Columbia ewes. Journal of Animal Science. Vol. 69, pp: 4734-4744.
10
Lamberson, W. R. and Thomas, D.L., 1984. Effects of inbreeding in sheep: a review. Animal Breeding Abstract. Vol. 52, 287 p.
11
Norberg, E. and Sørensen, A.C., 2007. Inbreeding trend and inbreeding depression in the Danish populations of Texel, Shropshire, and Oxford Down. Journal of Animal Science. Vol. 85, pp: 299-304.
12
Papi, N.; Mostafa-Tehrania, A.; Amanlou, H. and Memarian, M., 2011. Effects of dietary forage-to concentrate ratios on performance and carcass characteristics of growing fat-tailed lambs. Animal feed science and thechnology. Vol. 163, pp: 93-98.
13
Vatankhah, M. and Talebi, M.A., 2008. Genetic parameters of body weight and fat-tail measurements in lambs. Small Ruminant Research. Vol. 75, pp: 1-6.
14
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه ارزش غذایی جلبک دریایی سارگاسوم آنگوستیفولیوم در سواحل استان بوشهر با جلبک دریایی سیستوسیرا ایندیکا در سواحل استان سیستان و بلوچستان برای تغذیه نشخوارکنندگان
این پژوهش به منظور مقایسه ارزش غذایی دو جلبک دریایی استان های بوشهر (سارگاسوم آنگوستیفولیوم) و سیستان و بلوچستان (سیستوسیرا ایندیکا) برای تغذیه نشخوارکنندگان انجام شد. جهت تعیین قابلیت هضم، هر کدام از جلبکها به نسبتهای 10، 15 و 20 درصد با یونجه خشک، مخلوط شده و هر خوراک روی چهار رأس گوسفند نر بالغ بومی، با روش جمع آوری مدفوع آزمایش شدند. تیمارهای شش خوراک آزمایشی شامل: سه خوراک حاوی جلبک سارگاسوم و سه خوراک حاوی جلبک سیستوسیرا در قالب طرح کامل تصادفی بود. نتایج ترکیب شیمیایی شامل ماده خشک، ماده آلی، پروتئین خام، دیواره سلولی، دیواره سلولی منهای همیسلولز و انرژی خام به ترتیب برای جلبک سارگاسوم 92/6، 58/6، 4/8، 16/9، 14/6 درصد و 2316/3 کالری بر گرم و برای جلبک سیستوسیرا بهترتیب 93/2، 82، 15/2، 38/1، 27/7 درصد و 3267 کالری بر گرم بود. نتایج نشان داد که درصد مواد مغذی ذکر شده در بالا به جز ماده خشک، در سیستوسیرا نسبت به سارگاسوم افزایش معنیداری داشت. در بین تیمارهای خوراک سارگاسوم و سیستوسیرا، بهترین ضریب قابلیت هضم مواد مغذی را تیمار 20 درصد خوراک سیستوسیرا داشت که برای ماده خشک، ماده آلی، پروتئین خام، دیواره سلولی، دیواره سلولی منهای همی سلولز و انرژی خام به ترتیب، 58/8، 60/8، 64/5، 49/7، 50/8 و 62/1 درصد به دست آمد. به طورکلی، نتایج نشان داد که سیستوسیرا نسبت به سارگاسوم به دلیل داشتن پروتئین خام و انرژی خام بیش تر، خاکستر کم تر و به تبع آن، ماده آلی بیش تر، برای تغذیه دام مناسب تر بوده و مناسب ترین سطح استفاده آن، 20 درصد می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_96001_c59dea0d1522941f87c42a74b10e0cac.pdf
2019-09-23
35
44
ارزش غذایی
تغذیه نشخوارکنندگان
جلبک دریایی
سارگاسوم آنگوستیفولیوم
سیستوسیرا ایندیکا
عبدالمهدی
کبیری فرد
m51kabiri@gmail.com
1
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشارزی و منابع طبیعی استان بوشهر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
محمود
دشتی زاده
dashty1350@gmail.com
2
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشارزی و منابع طبیعی استان بوشهر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران
AUTHOR
امیرارسلان
کمالی
aakamali@gmail.com
3
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشارزی و منابع طبیعی استان بوشهر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران
AUTHOR
حسین
خاج
khajhossein@gmail.com
4
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشارزی و منابع طبیعی استان بوشهر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران
AUTHOR
فرحپور، م.؛ آبکنار، ع.م. و نوتاش، غ.ر.، 1389. بررسی کشت سه گونه جلبک دریایی Cystoseira indica، Sargassum illicifolium و Hypnea musciformis در سواحل چاه بهار. نشریه تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران. جلد 26، شماره3، صفحات 296 تا 304.
1
مکدونالد، پ.؛ ادواردز، ر.اِ.؛ گرینهال، ج.ف.د. و مورگان، سی.اِ.، 1996. تغذیه دام. ویرایش پنجم. چاپ دوم. ترجمه صوفیسیاوش، ر. و جانمحمدی، ح.، 1383. تهران، انتشارات آئیژ، ایران.
2
ولیکمال، ع.ر.، 1390. تاثیر سطوح مختلف جلبک دریایی Sargassum illicifolium بر روی عملکرد و فراسنجههای خونی و شکمبهای برههای پرواری. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، پایاننامه کارشناسی ارشد.
3
رضوی شیرازی،ح.،1373. تکنولوژی فرآوردههای دریایی (اصول نگهداری و عملآوری). انتشارات شیلانه. صفحات 31 تا 48.
4
Association of Official Analysis Chemistry (AOAC). 2001. Official Method of Analysis.17th ed. AOAC, Washington, DC. USA.
5
Banerjee, G.C., 1988. Feeds and Principles of Animal Nutrition. Oxford & IBH publication, Ltd.
6
Bocanegra, A.; Nieto, A.; Blas, B. and Sanches Muniz, F.J., 2003. Diets containing a high percentage of Nori or Konbu algae are well-accepted and efficiently utilized by growing rats but induce different degrees of histological changes in the liver and bowel. Food and Chemical Toxicology. Vol. 41, pp: 1473-1480.
7
Burtin, P., 2003. Nutritional value of seaweeds. Electronic Journal of Environmental, Agricultural and Food Chemistry. Vol. 2, pp: 498-503.
8
Carrillo, S.; Lopez, E.; Casas, M.M.; Avila, E.; Castillo, R. M.; Carranco, M.E.; Calvo, C. and Perez Gil, F., 2008. Potential use of seaweed in the laying hen ration to improve the quality of n-3 fatty acid enriched eggs. J of Applied Phycology. Vol. 20, pp: 721-728.
9
Casas, M.; Hernandez, H.; Marin, A.; Agulia, R. and Carrillo, S., 2003. Use of sargassum spp algae as supplement for goats and cattle. XIII congress latinoamericano de Nutrition. 9-13 Noviember. Acapulco Guerrero, Mexico.
10
Casas-Valdez, M.; Hernandez-Contreras, H.; Martin Alvarez, A.; Aguila-Ramirez, R.N.; Hernandez Guerrero, C.J.; Sanchez-Rodriguez, I. and Carrillo Dominguez, S., 2006. The seaweed Sargassum as tropical alternative for goats feeding. Revista de Biologica Tropical. Vol. 54, No. 1, pp: 83-92.
11
Cook Bessie, B., 1960. The Nutrition value of waste- grown algae. Presented at the 88th Annual meeting of the American Public Health Association. November 3, Inc, San Francisco, California.
12
Cruz-Suarez, L.E.; Tapia Salazar, M.; Nieto Lopez, M.G. and Ricque, D., 2008. A review of the effects of macroalgae in shrimp feeds and in co-culture. IX Simposio International de Nutricion Acuicola. 24-27 Noviember, Mexico.
13
Cummings, J.H. and Macfarlane, G.T., 1991. The control and consequences of bacterial fermentation in the human colon. Journal of Applied Bacteriology. Vol. 70, pp: 443-459.
14
Dawczynski, C.; Schubert, R. and Jahreis, G., 2007. Amino acids, fatty acids, and dietary fiber in edible seaweed products. Food Chemistry. Vol. 103, pp: 891-899.
15
Denis, C.; Morancais, M.L. M.; Deniaud, E.; Gaudin, P.; Wielgosz-Collin, G.; Barnathan, G.; Jaouen, P. and Fleurence, J., 2010. Study of the chemical composition of edible red macroalga Grateloupia turuturu from Brittany (France). Food Chemistry. Vol. 119, No. 3, pp: 913-917.
16
Fleurence, J., 1999. Seaweed proteins: biochemical nutritional aspects and potential uses. Trend in Science and Technology. Vol. 10, pp: 25-28.
17
Goecke, F.; Escobar, M. and Collantes, G., 2012. Chemical composition of Padina fernandeziana from Juan Fernandez Archipelago, Chile. Revista Latinoamericana de Biotecnologia Ambiental Algal. Vol. 3, No. 2, pp: 95-104.
18
Gojon, H.H.; Siqueiros, D.A. and Hernandez, H., 1998. In situ ruminal digestibility and degradability of Macrocytis pyrifera and Sargassum spp in bovine Livestock. Giencias Marinas. Vol. 24, pp: 463-481.
19
Hansen, H.R.; Hector, B.L. and Feldmann, J., 2003. A qualitative and quantitative of the seaweed diet of North Ronaldsay sheep. Animal Feed Science and Technology. Vol. 105, pp: 21-28.
20
Hayami, H. and Shino, K., 1958. Nutritional studies on decolorized Chlorella. Growth experimental on rats and the digestibility of a diet containing 19% of decolorized Chlorella. Annual Report of the National Institute of Nutrition. Toyamacho. Tokyo. pp: 56-58.
21
Hodgkinson, S.M., 2006. Evaluation of the quality of protein sources for inclusion in diets for monogastric animals. Ciencia e Investigaci on Agraria. Vol. 33, pp: 83-90.
22
Hong, D.D.; Hein, H.M. and Son, P.N., 2007. Seaweeds from Vietnam used for functional food, medicine and biofertilizer. Journal of Applied Phycology. Vol. 19, pp: 817-826.
23
Horie, Y.; Sugase, K. and Horie. K., 1995. Physiological differences of soluble and insoluble dietary fibre fractions of brown algae and mushrooms in pepsin activity in vitro and protein digestibility. Asia Pacific Journal of Clinical Nutrition. Vol. 4, pp: 251-255.
24
Hur, S.J.; Lim, B.O.; Decker, E.A. and McClements, D.J., 2011. In vitro human digestion model for food applications. Food Chemistry. Vol. 125, pp: 1-12.
25
Jarrige,R.,1989. Ruminant nutrition. Inra. Paris. France.
26
Karla, J.M.D. and Brooke, S., 2003. Nutritional composition of edible Hawaiium seaweeds. Journal of Applied Phycoloy. Vol. 15, pp: 513-524.
27
Karthikai, D.G.; Thirvmaran, G.; manivannan, K. and Anantharaman, P., 2009. Element composition of certain seaweeds for gulf Mannar. World Journal of Dairy and Food Sciences. Vol. 4, No. 1, pp: 46-55.
28
Kumar, V. and kaladharan. P., 2007. Amino acids in the seaweeds as an alternate source of protein for animal feed. Journal of the Marine Biological Association of India. Vol. 49, No. 1, pp: 35-40.
29
Lahaye, M., 1991. Marine algae as sources of fibers: determination of soluble and insoluble dietary fiber contents in some sea vegetables. Journal of the Science of Food and Agriculture. Vol. 54, pp: 587-594.
30
MacArtain, P.; Christopher, R.G.; Brooks, M.; Campbell, R. and Rowland, I.R., 2007. Nutritional value of edible seaweeds. Nutrition Reviews. Vol. 65, pp: 535-543.
31
Machu, L.; Misurcova, L.; Samek, D.; Hrabe, J. and Fisera, M., 2014. In vitro digestibility of different commericial edible algae products. Journal of Aquatic Food Product Technology. Vol. 23, pp: 423-435.
32
Marin, A.; Casas Valdez, M.; Carrialo, S.; Hernandez, H.; Monroy, A.; Sangines, L. and Perez Gil, F., 2009. The marine algae Sargassum spp. as feed for sheep in tropical and subtropical regions. International J of tropical biology. Vol. 37, pp: 1274-1281.
33
Marinho-Soriano, E.; Fonseca, P.C.; Carneiro, M.A. A. and Moreira, W.S.C., 2006. Seasonal variation in the chemical composition of two tropical seaweeds. Bio resource Technology. Vol. 97, pp: 2402-2406.
34
Martınez, T.F. and Moyano, F.J., 2003. Effect of tannic acid on in vitro enzymatic hydrolysis of some protein sources. Journal of the Science of Food and Agriculture. Vol. 83, pp: 456-464.
35
Misurcova, L.; Kracmar, S.; Klejdus, B. and Vacek, J., 2010. Nitrogen content, dietary fiber and digestibility in algal food products. Czech Journal of Food Sciences. Vol. 28, No. 1, pp: 27-35.
36
Norziah, M.H. and Ching, C.Y., 2000. Nutritional composition of edible seaweed Gracilaria changgi. Food Chemistry. Vol. 68, pp: 69-76.
37
Orskov, E.R.; Deb-Hovell, F.D. and Mould, F., 1980. The use of the nylon bag technique for the evaluation of feedstuff. Tropical animal production. Vol. 5, pp: 195-213.
38
Ortiz, J.; Romero, N.; Robert, P.; Araya, J.; Lopez Hernandez, J.; Bozzo, C.; Navarrete, E.; Osorio, A. and Rios, A., 2006. Dietary fiber, amino acid, fatty acid and tocopherol content of the edible seaweeds Ulva lactuca and Durvillaea antaractica. Food Chemistry. Vol. 99, No. 1, pp: 98-104.
39
Patarra, R.F.; Paiva, L. and Neto, A.I., 2011. Nutritional value of selected macroalgae. Journal of Applied Phycology. Vol. 23, pp: 205-208.
40
Pereira, R.; Valente, L.M.P.; Souse-Pinto, I. and Rema, P., 2012. Apparent Nutrient digestibility of seaweeds by rainbow trout and Nile tilapia (Oreochromis niloticuss). Algal Research. Vol. 1, pp: 77-82.
41
Perez, R.C., 1999. Composicion quimica de Sargassum spp colectado en La Bahia de La paz, B. C. S., Y La factibilidad de suaprovechamiento en forma directa O comofuente de alginate. Tesis de Maestria, La paz, Baja California sur, Mexico.
42
Prosky, L. and Karinen, J.F., 1960. Nutrition value of algae with the use of weanling rats. Abstracts, 5th International Congress on Nutrition, September 1-7, Washington, D. C, America.
43
Ruperez, P.; Ahrazem, O. and Leal, J.A., 2002. Potential antioxidant capacity of sulfated poly saccharides from edibic marine brown seaweed Fucus vesiculosus. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 50, pp: 840-845.
44
SAS. 2003. SAS/STAT User’s Guide, revised 9.1, Statistical analyses system institute Inc. Cary, NC.
45
Schnider, B.H. and Flatt, W.P., 1975. The evaluation of feeds through digestibility experiments. University of Georgia press Athens.
46
Se-Kwon, K., 2012. Handbook of Marine macroalgae: Biotechnology and Applied phycology, published by John wiley S sons, Ltd.
47
Shan, B.E.; Yoshida, Y.; Kuroda, E. and Yamashita, U., 1999. Immunomodulating activity of seaweed extract on human lymphocytes in vitro. International Journal of Immunopharmacol. Vol. 21, pp: 59-70.
48
Torbatinejad, N. and Sabine, J.R., 2001. Laboratory evaluation of some marine plants on south Australian beaches. Journal of Animal Feed Sciences and Technology. Vol. 3, pp: 91-100.
49
Urbano, M.G. and Goni, I., 2002. Bioavailability of nutrients in rats fed on edible seaweeds Nori (Porphyra tenera) and Wakame as a source of dietary fiber. Food Chemistry. Vol. 76, No. 3, pp: 281-286.
50
Wen, X.; Peng, Ch.; Zhou, H.; Lin, G.; Lin, Zh.; Chen, Sh. and Li, P., 2006. Nutritional composition and assessment of Gracilaria lemaneiformis. J of Integrative Plant Biology. Vol. 48, No. 9, pp: 1047-1053.
51
Wong, K.H. and Cheung, C.K., 2000. Nutritional evaluation of some subtropical red and green seaweeds Part I: proximate composition, amino acid profiles and some physico-chemical properties. Food Chemistry. Vol. 71, pp: 475-482.
52
Wong, K.H. and Cheung, C.K., 2001. Nutritional evaluation of some subtropical red and green seaweeds part II: In vitro protein digestibility and amino acid profiles of protein concentrates. Food chemistry. Vol. 72, pp: 88-17.
53
Yang, Ch.; Chung, D. and You, S.G., 2008. Determination of physicochemical properties of sulphated fucans from sporophyll of Undaria pinnatifida using light scattering technique. Food Chemistry. Vol. 111, pp: 503-507.
54
You, S.G.; Yang, Ch.; Lee, H.Y. and Lee, B.Y., 2010. Molecular characteristics of partially hydrolyzed fucoidans from sporophyll of Undaria pinnatifida and their in vitro anticancer activity. Food Chemistry. Vol. 119, pp: 554-559.
55
Zubia, M.; Payri, C.E.; Deslandes, E. and Guezennec, J., 2003. Chemical composition of attached and drift specimens of sargassum mangarevense and Turbinaria ornata (phaeophyta: Fucales) from Tahiti, French Polynesia. Botanica Marina. Vol. 46, pp: 562-571.
56
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی تاثیر غنی سازی بقایای پس از برداشت ذرت دانه ای با اوره و ملاس بر عملکرد برههای نر پرواری ترکی-قشقایی
هدف این پژوهش، ارزیابی تاثیر غنی سازی بقایای ذرت فرآوری شده با اوره و ملاس بر عملکرد رشد بره های نر پرواری ترکی قشقایی بود. ابتدا، بقایای ذرت دانه ای پس از برداشت دانه ذرت به وسیله کمباین، جمع آوری و با اوره و ملاس فرآوری گردید. سپس ترکیبات شیمیایی بقایای ذرت (Zea mays L) دانه ای رقم سینگل کراس 704 فرآوری شده و فرآوری نشده تعیین و قابلیت هضم آن ها به روش درون تنی (in vivo) به دست آمد. تیمارهای آزمایشی، در خوراک برههای نر ترکی-قشقایی در سه سطح صفر، 30 و 50 درصد کاه ذرت فرآوری شده و فرآوری نشده جایگزین بخش علوفهای جیره در قالب طرح کاملاً تصادفی در یک دوره پرواربندی استفاده گردید. نتایج نشان داد که قابلیت هضم ظاهری ماده خشک، ماده آلی، فیبر نامحلول در شوینده خنثی (NDF= Neutral Detergent Fiber)، فیبر نامحلول در شوینده اسیدی (ADF= Acid Detergent Fiber) بقایای ذرت دانه ای فرآوری شده در یک سطح اوره و دو سطح مختلف ملاس و بقایای ذرت دانه ای فرآوری نشده با یکدیگر تفاوت آماری معنی داری داشتند. به نظر می رسد با توجه به نتایج صفات پرواری و گوارش پذیری، استفاده از بقایای ذرت دانه ای فرآوری شده با 4 درصد اوره به همراه 10 درصد ملاس و به نسبت 50 به50 در تغذیه بره های پرواری در مقایسه با تیمارهای دیگر، افزایش وزن روزانه مناسب تری را به همراه داشته باشد.
http://www.aejournal.ir/article_96002_f23421f9d7e7b3363de96921836301d0.pdf
2019-09-23
45
50
بره های پرواری
بقایای ذرت دانهای غنی شده
ترکیب شیمیایی
قابلیت هضم
عبدالحمید
کریمی
ab.karimi@areeo.ac.ir
1
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشارزی و منابع طبیعی استان فارس، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، شیراز، ایران
LEAD_AUTHOR
امیر رضا
صفایی
amirrezasafaei@gmail.com
2
موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
AUTHOR
علیرضا
آقاشاهی
aghashahimobin@gmail.com
3
موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
AUTHOR
چوگان، ر.، 1383. تولید بذر ذرت. سازمان تحقیقات و آموزش کشاورزی. 103 صفحه.
1
فضایلی، ح. و موسوی سعید، ع.، 1387. ارزش غذایی و قابلیت استفاده از بقایای ذرت دانه ای از نظر تغذیه دام. اولین همایش ملی مدیریت و توسعه کشاورزی پایدار در ایران.
2
موسوی سعید، ع.؛ یزدان پناه، ل.؛ خوارزمی، م. و غلامی، ح.، 1393. تعیین ارزش غذایی و قابلیت هضم بقایای ذرت دانه ای در استان کرمان به روش In vivo. فصلنامه تحقیقات کاربردی در علوم دامی. دوره 3، شماره 12، صفحات 59 تا 64..
3
موسوی، م.؛ غلامی، ح. و نیکخواه، ع.، 1375. بررسی روش تعیین قابلیت هضم مواد خوراکی با استفاده از حیوان. مجموعه مقالات اولین سمینار پژوهشی تغذیه دام کشور.
4
هاشمی، م.، 1375. خوراک ها و خوراک دادن و جیره نویسی 1. انتشارات فرهنگ جامع. 576 صفحه.
5
AOAC. 1990. Official methods of analysis. 15th edn. Association of Official Analytical Chemists, Washington DC.
6
Ayers, G.E., 1973. Harvesting and storing row-crop forages. Nebraska Crop Residue Symposium. pp: A1-A5.
7
Berger, l., 1977. Effect of harvest date and chemical treatment on the corn stalklage. J.Anim. Sci. Vol. 49, pp: 1312-1316.
8
Chapple, W.P.; Cecava, M.J.; Faulkner, D.B. and Felix, T.L., 2015. Effects of feeding processed corn stover and distillers grains on growth performance and metabolism of beef cattle. J. Anim. Sci. Vol. 93, No. 8, pp: 4002-4011. doi:10.2527/jas.2015-9059.
9
Colenbrander, V.F.; Muller, L.D.; Wasson, J.A. and Cunningham, M.D., 1971. Effects of added urèa and ammonium polyphosphate to corn stover silages on animal performance. J. Anim. Sci. Vol. 33, pp: 1091-1101.
10
Duckworth, M.J.; Schroeder, A.R.; Shike, D.W.; Faulkner, D.B. and Felix, T.L., 2014. Effects of feeding calcium oxide on growth performance, carcass characteristics, and ruminal metabolism of cattle. Prof. Anim. Sci. Vol. 30, pp: 551-560.
11
Fernandez-Rivera, S. and Klopfenstein, T.J., 1989. Yield and quality components of corn crop residues and utilization of these residues by grazing cattle. J. Anim. Sci. Vol. 67, pp: 597-605.
12
Fernandez-Rivera, S. and Klopfenstein, T.J., 1989. Diet composition and daily gain of growing cattle grazing dryland and irrigated cornstalks at several stocking rates. J. Anim. Sci. Vol. 67, pp: 590-596.
13
Fernandez-Rivera, S.; Klopfenstein, T.J. and Britton, R.A., 1989. Growth response to escape protein and forage intake by growing cattle grazing cornstalks. J. Anim. Sci. Vol. 67, pp: 574-580.
14
Gigax, J.A., 2011. Animal Performance and Diet Quality While Grazing Corn Residue. A thesis for the degree of Master of Science.University of Nebraska, Lincoln.
15
Johnson, T.O.; Harvey, R.W.; Goode, L.; Linnerud, A.C. and Crickenberger., R.G., 1984. Effect of stage of maturity and addition of molasses on nutritive value of maize stover silage. Anim. Feed Sci. and Technol. Vol. 12, No. 1, pp: 65-74.
16
Klopfenstein, T.J.; Roth, L.; Fernandez-Rivera, S. and Lewis, M., 1987. Corn residues in beef production systems. J. Anim. Sci. Vol. 65, pp: 1139-1148.
17
Lamm, W.D. and Ward, J.K., 1981. Compositional changes in corn crop residues grazed by gestating beef cows. J. Anim. Sci. Vol. 52, pp: 954-958.
18
McDonnell, L.L.; 1982. Means of improving the performance of ruminant fed corn residues. Ph.D. Dissertation. Univ. of Nebraska, Lincoln.
19
Prewitt, R.M.; Montross, M.D.; Shearer, A.S.; Strombaugh, T.S.; Higgins, S.F.; McNeill, S.G. and Sokhansanj, S., 2007. Corn stover availability and collection efficiency using typical hay equipment. Transactions of the ASABE. Vol. 50, No. 3, pp: 705-711.
20
Myers, D. and Underwood, J., 1992. Harvesting Corn Residue. Agronomy Fact Sheet 003-92. Ohio State University Extension.
21
National Research Council (NRC). 2007. Nutrient Requirement of Sheep. 6th ed. National Academy Press. Washington D.C. 285 P.
22
Russell, J.R.; Loy, D.D.; Anderson, J.A. and Cecava, M.J., 2011. Potential of chemically treated corn stover and modified distiller grains as a partial replacement for corn grain in feedlot diets. ISU Anim. Ind. Rep. 665 p. ASL R2586.
23
SAS. 2002. Statistical Analytical Systems User's Guide. (Version 9.1). SAS Institute Inc. Cary, North Carolina, USA.
24
Sewell, J.R.; Berger, L.L.; Nash, T.G.; Cecava, M.J.; Doane, P.H.; Dunn, J.L.; Dyer, M.K. and Pyatt, N.A., 2009. Nutrient digestion and performance by lambs and steers fed thermochemically treated crop residues. J. Anim. Sci. Vol. 87, pp: 1024-1033.
25
Silva, L.F.P.; Cassoli, L.D.; Roma Júnior, L.C.; Rodrigues, A.C.O. and Achado, P.F.M., 2008. In situ degradabilityof corn stover and elephant-grass harvested at four stages of maturity. Sci. Agric. (Piracicaba, Braz.). Vol. 65, No. 6, pp: 595-603.
26
Sundestol, F. and Owen, E., 1984.Strow and Other Fibrous By-Products as Feed. Elsevier Science Publisher. Amesterdam. Holland. 245 P.
27
Van Soest, J.P.; Robertson, J.B. and Lewis, B.A., 1991. Methods for dietary fiber, neutral detergent fiber and non-starch polysaccharides in relation to animal nutrition. Journal Dairy Science. Vol. 74, pp: 3583-3597.
28
Vetter, R.L., 1973. Systems of using crop residues on cow-calf enterprises. Proc. 6th Conf., Am. Forage and Grassl. Council. pp: 45-54.
29
Vetter, R.L.; Weber, D. and Gay, N., 1970. Grazing cornstalks and feeding corn plant refuse to beef cows. A.S. Leaflet R137. Iowa State Univ.
30
Vilea Carvalho, P.H., 2016. Enhancing the feeding value of corn crop residues to improve beef cattle production. Submitted in partial fulfillment of the requirements for the degree of Master of Science in Animal Sciences in the Graduate College of the University of Illinois at Urbana-Champaign. 75 p.
31
Wilson, C.B.; Erickson, G.E.; Klopfenstein, T.J.; Rasby, R.J.; Adams D.C. and Rush, I.G., 2004. A review of corn stalk grazing on animal performance and crop yield. Nebraska beef cattle report. MP 80, pp: 13-15.
32
ORIGINAL_ARTICLE
اثر استفاده از سطوح مختلف اکسیدمنیزیم با خلوص بالا بر ویژگیهای هضمی-تخمیری و تولید متان یک جیرۀ پرکنسانتره در محیط کشت ثابت
از تغییر الگوی تخمیر در شکمبه، میتوان در جهت متعادل کردن تولید متان استفاده نمود. اکسید منیزیم علاوه بر تأمین بخش اعظمی از منیزیم مورد نیاز دام، از ظرفیت بافری ویژهای نیز برخوردار است و میتواند الگوی تخمیر در شکمبه را دستخوش تغییراتی نماید. در این پژوهش اثر استفاده از یک اکسیدمنیزیم تجاری به مقدار 1، 2، 3 و 4 درصد یک جیرۀ پرکنسانتره در یک محیط کشت تهیه شده ازمایع شکمبۀ گوسفند درشرایط in vitro بررسی شد. برخی پارامترهای تخمیری، تجزیه پذیری، تولیدمتان وفراسنجههایتولید گاز ناشی از انکوباسیون جیره در محیط کشت اندازهگیری شدند. در اثر افزودن اکسیدمنیزیم، pH محیط کشت، افزایش معنیداری نسبت به تیمار شاهد نشان داد ولی اسیدهای چرب فرار کل (TVFA) تغییر نکرد. کم ترین مقدار نیتروژن آمونیاکی (23/26 میلیگرم/دسیلیتر) در سطح 4 درصد اکسیدمنیزیم مشاهده شد. فراسنجههای تولید گاز (گاز 12، 24، 48 و 72 ساعت و نرخ ثابت تولید گاز) و تولید متان در تیمارهای دارای اکسیدمنیزیم،کاهش معنیداری نسبت به تیمارشاهد نشان داد. اگرچه ضریب تفکیک پذیری(PF)و تودۀ میکروبی تولیدی، تحت تأثیر تیمارها قرار نگرفت، اما راندمان سنتز تودۀ میکروبی در تیمارهای دارای اکسیدمنیزیم افزایش معنیداری نشان داد. بهنظر میرسد که کاربرد اکسیدمنیزیم میتواند الگوی تخمیر شکمبه را از طریق کاهش نرخ متان، افزایش قابلیت هضم ماده آلی و راندمان سنتز تودۀ میکروبی، بهبود بخشد، هرچند که انجام آزمایشات بیش تر درخصوص تعیین اثرات اکسیدمنیزیم بر روی حیوانات زنده نیز در آینده نیاز است.
http://www.aejournal.ir/article_95569_79adb25d25c47ea6544b87499fb830e0.pdf
2019-09-23
51
62
اکسید منیزیم
بافر
محیط کشت
تخمیر
تولید متان
محسن
کاظمی
phd1388@gmail.com
1
گروه علوم دامی، مجتمع آموزش عالی تربت جام، تربت جام، ایران
LEAD_AUTHOR
موسی
وطندوست
2
گروه کشاورزی، دانشگاه پیام نور، تهران، ایران
AUTHOR
کاظمی، م.؛ ابراهیمی خرمآبادی، ا.؛ ولی زاده، ر.؛ حیدری، س. و اسکندری تربقان، آ.، 1397. اثر رنگ بروموکروزول گرین بر فعالیتهای تخمیری میکروارگانیسمهای شکمبه و حذف آن از آب با استفاده از خاکستر پوست خربزه و بنتونیت سدیم فرآوریشده. نشریه علوم دامی (پژوهش و سازندگی). شماره 120، صفحات 241 تا 252.
1
مهدوی راد، ن.؛ چاجی، م.؛ بوجارپور، م. و دهقان بنادکی، م.، 1396. بررسی ظرفیت بافری چند ترکیب بافری رایج در تغذیۀ نشخوارکنندگان با استفاده از روش عیارسنجی اسید و تأثیر آن ها بر فراسنجه های تولید گاز. نشریه علوم دامی ایران. دوره 48، شماره 4، صفحات 559 تا 571.
2
Bach, A.; Guasch, I.; Elcoso, G.; Duclos, J. and Khelil-Arfa, H., 2017. Modulation of rumen pH by sodium bicarbonate and a blend of different sources of magnesium oxide in lactating dairy cows submitted to a concentrate challenge. Journal of Dairy Science. Vol. 101, pp: 1-12.
3
Bargo, F.L.; Kolver, E. and Delahoy, J., 2003. Invited review: production and digestion of supplemented dairy cows on pasture. Journal of Dairy Science. Vol. 86, No. 1, pp: 1-42.
4
Barnett, A.J.G. and Reid, R., 1957. Studies on the production of volatile fatty acids from grass in artificial rumen. 1. Volatile fatty acids production from fresh grasses. The Journal of Agricultural Science (Cambridge). Vol. 48, pp: 315-321.
5
Beauchemin, K.A. and Yang, W.Z., 2005. Effects of physically effective fiber on intake, chewing activity, and ruminal acidosis for dairy cows fed diets based on corn silage. Journal of Dairy Science. Vol. 88, No. 6, pp: 2117-2129.
6
Beauchemin, K.A.; Kreuzer, M.; O’Mara, F. and McAllister, T.A., 2008. Nutritional management for enteric methane abatement: a review. Animal Production Science. Vol. 48, pp: 21-27.
7
Beede, D., 2017. Can we differentiate supplemental magnesium sources nutritionally? pp: 99-107 in Proc. Tri-State Dairy Nutrition Conference. M. L. Eastsridge, ed. Fort Wayne, IN.
8
Benchaar, C. and Greathead, H., 2011. Essential oils and opportunities to mitigate enteric methane emissions from ruminants. Animal Feed Science and Technology. Vol. 166-167, pp: 338-355.
9
Blummel, M. and Ørskov, E.R., 1993. Comparison of in vitro gas production and nylon bag degradability of roughage in predicting feed intake in cattle. Animal Feed Science and Technology. Vol. 40, pp: 109-119.
10
Blummel, M.; Makkar, H.P.S. and Becker, K., 1997. In vitro gas production: a technique revisited. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition. Vol. 77, pp: 24-34.
11
Blummel, M.; Makkar, H.P.S. and Becker, K., 1997. In vitro gas production: a technique revisited. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition. Vol. 77, pp: 24-34.
12
Blummel, M.; Steingass, H. and Becker, K., 1997. The relationship between in vitro gas production, in vitro microbial biomass yield and 15N incorporation and its implications for prediction of voluntary feed intake of roughages. British Journal of Nutrition. Vol. 77, pp: 911-921.
13
Calsamiglia, S.; Blanch, M.; Ferret, A. and Moya, D., 2012. Is subacute ruminal acidosis a pH related problem? Causes and tools for its control. Animal Feed Science and Technology. Vol. 172, pp: 42-50.
14
Castro-Montoya, J.; De Campeneere, S.; Van Ranst, G. and Fievez, V., 2012. Interactions between methane mitigation additives and basal substrates on in vitro methane and VFA production. Animal Feed Science and Technology. Vol. 176, pp: 47-60.
15
Chalupa, W., 1981. Rumen fermentation and modification. Developments in industrial microbiology. Vol. 22, pp: 277-293.
16
Clark, J.H. and Davis, C.L., 1980. Some aspects of feeding high producing dairy cows. Journal of Dairy Science. Vol. 63, pp: 873-85.
17
Cottle, D.J.; Nolan, J.V. and Wiedemann, S.G., 2011. Ruminant enteric methane mitigation: A review. Journal of Animal Production Science. Vol. 51, pp: 491-514.
18
DeVries, T.J.; Beauchemin, K.A.; Dohme, F. and Schwartzkopf-Genswein K.S., 2009. Repeated ruminal acidosis challenges in lactating dairy cows at high and low risk for developing acidosis: Feeding, ruminating, and lying behavior. Journal of Dairy Science. Vol. 92, pp: 5067-5078.
19
Enemark, J.M.D., 2008. The monitoring, prevention and treatment of sub-acute ruminal acidosis (SARA): A review. Veterinary Journal. Vol. 176, No. 1, pp: 32-43.
20
Erdman, R.A., 1988. Dietary buffering requirements of the lactating dairy cow: a review. Journal of Dairy Science. Vol. 71, pp: 3246-3266.
21
Fievez, V.; Babaymo, O.J. and Demeyer, D., 2005. Estimation of direct and indirect gas production in syringes: A tool to estimate short chain fatty acid production that requires minimal laboratory facilities. Animal Feed Science and Technology. Vol. 123, pp: 197-210.
22
Getachew, G.; Blummel, M.; Makkar, H.P.S. and Becker, K., 1998. In vitro gas measuring techniques for assessment of nutritional quality of feeds: a review. Animal Feed Science and Technology. Vol. 72, pp: 261-281.
23
Getachew, G.; Robinson, P.H.; DePeters, E.J. and Taylor, S.J., 2004. Relationships between chemical composition, dry matter degradation and in vitro gas production of several ruminant feeds. Animal Feed Science and Technology. Vol. 111, No. 1-4, pp: 57-71.
24
Herod, E.L.; Bechtle, R.M.; Bartley, E.E. and Dayton, A.D., 1978. Buffering ability of several compounds in vitro and the effect of a selected buffer combination on ruminal acid production in vitro. Journal of Dairy Science. Vol. 61, pp: 1114-1122.
25
Hill, J.; McSweeney, C.; Andre-Denis, G.W.; Bishop-Hurley, G. and Kalantar-zadeh, K., 2016. Measuring Methane Production from Ruminants. Trends in Biotechnology.Vol. 34, No. 1, pp: 26-35.
26
Hoover, W.H., 1986. Chemical factors involved in ruminal fiber digestion. Journal of Dairy Science. Vol. 69, No. 10, pp: 2755-2766.
27
Horan, B.; Faverdin, P.; Delaby, L.; Rath, M. and Dillon, P., 2006. The effect of strain of Holstein-Friesian dairy cow and pasture-based system on grass intake and milk production. Journal of Animal Science. Vol. 82, No. 04, pp: 435-444.
28
Huhtanen, P.; Cabezas-Garcia, E.H.; Utsumi, S. and Zimmerman, S., 2015. Comparison of methods to determine methane emissions from dairy cows in farm conditions. Journal of Dairy Science. Vol. 98, pp: 3394-3409.
29
IPCC. 1996. Guidelines for National Greenhouse Gas Inventories-Greenhouse Gas Inventory Reference Manual. IPCC WGI Technical Support Unit, Bracknell, UK.
30
Jasaitis, D.K.; Wohlt, J.E. and Evans, J.L., 1987. Influence of feed ion content on buffering capacity of ruminant feedstuffs in vitro. Journal of Dairy Science. Vol. 70, No. 7, pp: 1391-1403.
31
Kaplan, O.; Deniz, S.; Karsli, M.A.; Nursoy, H. and Avci, M., 2010. Effects of sodium bicarbonate, magnesium oxide and dried sugar beet pulp in diets of dairy cows on milk yield, milk composition and rumen fluid and some blood parameters. Journal of Animal and Veterinary Advances. Vol. 9, No. 11, pp: 1570-1574.
32
Kazemi, M.; Tahmasbi, A.M.; Valizadeh, R.; Naserian, A.A. and Moheghi M.M., 2009. Assessment of nutritive value of four dominant weed species in range of Khorasan distinct of Iran by in vitro and in situ techniques. Journal of Animal and Veterinary Advances. Vol. 8, No. 11, pp: 2286-2290.
33
Khazaal, K.; Dentinho, M.T.; Ribeiro, J.M. and Ørskov, E.R., 1995. Prediction of apparent digestibility and voluntary intake of hays fed to sheep: comparison between using fiber components, in vitro digestibility or characteristics of gas production or nylon bag degradation. Animal Science. Vol. 61, pp: 527-53.
34
Komolong, M.K.; Barber, D.G. and McNeill, D.M., 2001. Post-ruminal protein supply and N retention of weaner sheep fed on a basal diet of Lucerne hay (Medicago sativa) with increasing levels of quebracho tannins. Animal Feed Science and Technology. Vol. 92, No. 1-2, pp: 59-72.
35
Le Ruyet, P. and Tucker, W.B., 1992. Ruminal buffers: temporal effects on buffering capacity and pH of ruminal fluid from cows fed a high concentrate diet. Journal of Dairy Science. Vol. 75, No. 4, pp: 1047-1077.
36
Leng, R.A., 1993. Quantitative ruminant nutrition-a green science. Australian Journal of Agricultural Research. Vol. 44, pp: 363-380.
37
Loerch, S.C.; Berger, L.L.; Gianola, D. and Fahey, J.G.C., 1983. Effects of dietary protein source and energy level on in situ nitrogen disappearance of various protein sources. Journal of Animal Science. Vol. 57, pp: 1037-1047.
38
Makkar, H.P.S., 2004. In: Assessing Quality and Safety of Animal Feeds. FAO Animal Production and Health Series 160. Recent advances in the in vitro gas method for evaluation of nutritional quality of feed resources. In FAO, Rome. pp: 55-88.
39
McAllister, T.A. and Newbold, C.J., 2008. Redirecting rumen fermentation to reduce methanogenesis. Australian Journal of Experimental Agriculture. Vol. 48, pp: 7-13.
40
Makkar, H.P.S., 2010. In: In vitro screening of plant resources for extra-nutritional attributes in ruminants. In vitro screening of feed resources for efficiency of microbial protein synthesis (pp: 106-144). Nuclear and Related Methodologies (Ed.), New York, Springer.
41
Marden, J.P.; Julien, C.; Monteils, V.; Auclair, E.; Moncoulon, R. and Bayourthe, C., 2008. How does live yeast differ from sodium bicarbonate to stabilize ruminal pH in high-yielding dairy cows? Journal of Dairy Science. Vol. 91, pp: 3528-3535.
42
McIntosh, F.M.; Williams, P.; Losa, R.; Wallace, R.J.; Beever, D.A. and Newbold, C.J., 2003. Effects of Essential Oils on Ruminal Microorganisms and Their Protein Metabolism. Applied and Environmental Microbiology. Vol. 69, No 8, pp: 5011-5014.
43
Menke, K.H. and Steingass, H., 1988. Estimation of the energetic feed value obtained from chemical analysis and in vitro gas production using rumen fluid. Animal Research Development. Vol. 28, pp: 7-55.
44
Mitsumori, M.; Shinkai, T.; Takenaka, A. and Enishi, O., 2012. Responses in digestion, rumen fermentation and microbial populations to inhibition of methane formation by a halogenated methane analogue. British Journal of Nutrition. Vol. 108, pp: 482-491.
45
Moss, A.R. and Givens, D.I., 1993. Effect of supplement type and grass silage: concentrate ratio on methane production by sheep. The British Society of Animal Science. Vol. 1993, pp: 51-52.
46
Nagaraja, T.G.; Newbold, C.J.; van Nevel, C.J. and Demeyer D.I., 1997. In: Hobson P.N., Stewart C.S. (eds). Manipulation of ruminal fermentation. The Rumen Microbial Ecosystem. Springer, Dordrecht.
47
Nooriyan Soroor, M.E. and Moeini, M.M., 2015. The effect of eucalyptus essential oil on sheep in vitro fermentation parameters and production of methane. Journal of Research in Animal Nutrition. Vol. 2, No. 3, pp: 19-26.
48
NRC. 2007. Nutrient requirements of small ruminants: Sheep, goats, cervids, and new world camelids. 6th Edition. Washington: National Academy Press, Washington, D.C., USA. 384 p.
49
Okeke, G.C.; Buchanan-Smith, J.G. and Grovum, W.L., 1983. Effects of buffers on ruminal rate of passage and degradation of soybean meal in steers. Journal of Animal Science. Vol. 56, No. 6, pp: 1393-1399.
50
Ørskov, E.R. and McDonald, I., 1979. The estimation of protein degradability in the rumen from incubation measurements weighted according to rate of passage. Journal of Agricultural Science. Vol. 92, pp: 499-503.
51
Patra, A.K. and Yu, Z., 2013. Effects of gas composition in headspace and bicarbonate concentrations in media on gas and methane production, degradability, and rumen fermentation using in vitro gas production techniques. Journal of Dairy Science. Vol. 96, pp: 4592-4600.
52
Plaizier, J.C.; Krause, D.O.; Gozho, G.N. and McBride, B.W., 2008. Subacute ruminal acidosis in dairy cows: The physiological causes, incidence and consequences. Veterinary Journal. Vol. 176, pp: 21-31.
53
Rogers, J. and Davis, C.L., 1982a. Rumen volatile fatty acid production and nutrient utilization in steers fed a diet supplemented with sodium bicarbonate and monensin. Journal of Dairy Science. Vol. 65, pp: 944-952.
54
Rogers, J.A.; Davis, C.L. and Clark, J.H., 1982b. Alteration of rumen fermentation, milk fat synthesis and nutrient utilization with minerals salts in dairy cows. Journal of Dairy Science. Vol. 65, pp: 577-586.
55
Russell, J.B.; Strobel, H.J. and Chen, G., 1988. Enrichment and isolation of a ruminal bacterium with a very high specific activity of ammonia production. Applied and Environmental Microbiology. Vol. 54, pp: 872-877.
56
Sallam, S.M.A., 2009. Bueno ICS, Brigide P, Godoy PB, Vittii, D.M.S.S. and Abdalla A.L. Efficiency of eucalyptus oil on in vitro ruminal fermentation and methane production. Nutritional and Foraging Ecology of Sheep and Goats. Vol. 85, pp: 267-272.
57
SAS Institute INC. 2002. Sas user’s Guide: statistics. Statistical Analysis Systems Institute Inc. Cary NC.
58
Stock, R.A.; Brink, D.R.; Britton, R.A.; Goedeken, F.K.; Sindt, M.H.; Kreikemeier, K.K.; Bauer, M.L. and Smith, K.K., 1987. Feeding combinations of high moisture corn and dry-rolled grain sorghum to finishing steers. Journal of Animal Science. Vol. 65, pp: 290-302.
59
Tebbe, A.W.; Wyatt, D.J. and Weiss, W.P., 2018. Effects of magnesium source and monensin on nutrient digestibility and mineral balance in lactating dairy cows. Journal of Dairy Science. Vol. 101, No 2, pp: 1152-1163.
60
Teh, T.H.; Hemken, R.W.; Bremel, D.H. and Harmon R.J., 1987. Comparison of buffers on rumen functions, turnover rate and gastric secretions in Holstein steers. Animal Feed Science and Technology. Vol. 17, pp: 257-270.
61
Theodorou, M.K.; Williams, B.A.; Dhanoa, M.S.; McAllan, A.B. and France, J., 1994. A simple gas production method using a pressure transducer to determine the fermentation kinetics of ruminant feeds. Animal Feed Science and Technology. Vol. 48, pp: 185-197.
62
Thomson, D.J.; Beever, D.E.; Latham, M.J. and Sharpe, M.E., 1978. The effect of inclusion of mineral salts in the diet on dilution rate, the pattern of rumen fermentation and the composition of the rumen micro flora. The Journal of Agricultural Science. Vol. 91, No. 1, pp: 1-7.
63
Thrune, M.; Bach, A.; Ruiz Moreno, M.; Stern, M.D. and Linn, J.G., 2009. Effects of Saccharomyces cerevisiae on ruminal pH and microbial fermentation in dairy cows. Livestock Science. Vol. 124, pp: 261-265.
64
Umucalilar, H.D. and Seker, E., 2000. Effects of sodium bicarbonate and magnesium oxide as buffers on in vitro digestibility of grains. Veterinary Bilimleri Dergisi.Vol. 16, No. 2, pp: 129-135.
65
Van Soest, P.J., 1994. Nutritional ecology of ruminants. 2nd edition. Cornell University Press, USA.
66
Vercoe, E.P.; Makkar, H.P.S. and Schlink, A.C., 2010. In vitro screening of plant resources for extra nutritional attributes in ruminants: nuclear and related methodologies (Ed.), In vitro Screening of Feed Resources for Efficiency of Microbial Protein Synthesis, (pp: 106-144). New York, Springer.
67
Wang, M.; Wang, R.; Zhang, XM.; Ungerfeld, EM.; Long, D.; Mao, HX.; Jiao, JZ.; Beauchemin, KA. and Tan, Z., 2017. Molecular hydrogen generated by elemental magnesium supplementation alters rumen fermentation and microbiota in goats. Journal of British Nutrition. Vol. 118, pp: 401-410.
68
Wilson, D.V.; Evans, A.T.; Carpenter, R.A. and Mullineaux, D.R., 2004. The effects of four anesthetic protocols on splenic size in dogs. Veterinary Anesthesia and Analgesia. Vol. 31, No. 2, pp: 102-108.
69
Wolin, M.J., 1960. A Theoretical Rumen Fermentation Balance. Journal of Dairy Science. Vol. 43, No. 10, pp: 1452-1459.
70
Zinno, R.A., 1991. Comparative feeding value of steam-flaked corn and sorghum in finishing diets supplemented with or without sodium bicarbonate. Journal of Animal Science. Vol. 69, pp: 105-116.
71
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی و شناسایی انگل های کرمی دستگاه گوارش در اسب های استان تهران
بیماری هایانگلی دستگاه گوارش دارای اثرات سوء بسیاری مانند کاهش وزن، لاغری، عدم رشد، اسهال، لاغری و عدم بهره وری کافی در اسب بوده و در شرایط آلودگی های شدید کولیک و مرگ را به دنبال دارد. در این تحقیق نمونه مدفوع 294 راس اسب متعلق به 15 باشگاه از مناطق مختلف استان تهران از نظر آلودگی به انگل های کرمی دستگاه گوارش مورد بررسی قرار گرفت. نمونه های مدفوع به روش کلینتون لین مورد آزمایش و از نظر EPG مورد بررسی قرار گرفت. تشخیص نوع آلودگی براساس مشاهده تخم انگل ها در آزمایش میکروسکوپی مدفوع صورت گرفت. از تعداد 294 نمونه مدفوع جمع آوری شده از باشگاه های سوارکاری، 61 نمونه دارای آلودگی کرمی بودند (20/7%) که از این بین 48 نمونه آلودگی به پاراسکاریس (16/3%) و 13 نمونه آلودگی به استرونگل (4/42%) را نشان دادند و در دو نمونه (0/68%) از چسب های اسکاچ نیز تخم اکسیور مشاهده گردید. میزان تخم کرم درمدفوع اسب ها بین 12-1عدد بود. تخم های مشاهده شده شامل استرونگل ها و پارا آسکاریس بودند. نتایج حاصل از کشت مدفوع این اسب ها نشان داد که لاروهای مرحله سوم به دست آمده از نوع استرونگل کوچک بودند.
http://www.aejournal.ir/article_96008_1f260d1f8f1100977630f61c901b45cd.pdf
2019-09-23
63
68
اسب
مدفوع
کرم
پاراسکاریس
استرونگل
اکسیور
سید جلال
میریان
mirian@rvsri.ac.ir
1
موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
احمدرضا
محمدی
arm531@gmail.com
2
موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
AUTHOR
محمدرضا
اسدی
asadimohammadreza@yahoo.com
3
موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
AUTHOR
حمیدرضا
فردوسی
ferdowsi_hr@yahoo.com
4
موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
AUTHOR
اسلامی، ع.، 1383. کرم شناسی دامپزشکی جلد2. انتشارات دانشگاه تهران. صفحات 51 تا 52.
1
اسلامی،ع. و رنجبربهادری، ش.، 1386. روش های آزمایشگاهی تشخیص بیماری های کرمی. انتشارات دانشگاه آزاد اسلامی گرمسار. صفحات 55 تا 192.
2
اسلامی، ع.؛ قره داغی، ی. و هاشم زاده، ع.، 1386. بررسی مدفوع تک سمیان شهرستان تبریز از نظر آلودگی به کرم های لوله گوارش. مجله علوم تخصصی دامپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی تبریز. دوره 1، شماره 4، صفحات 35 تا 48.
3
پاکزادشهابی، م. و برجی، ح.، 1387. بررسی آلودگی به انگل های گوارشی در سوارکاری های اطراف مشهد. خلاصه مقالات پانزدهمین کنگره دامپزشکی ایران.
4
تاجیک،ج.؛ میرشاهی،ع.؛ رزمی، غ. و محمدی، غ.، 1389. بررسی آلودگی کرمی اسب های ترکمن در منطقه جرگلان. پژوهش و سازندگی. شماره 87، صفحات 54 تا 56.
5
حسینی، س.ح. و بکایی، س.، 1387. بررسی آلودگی کرمی اسبان سواری اطراف تهران. مجله دامپزشکی ایران. شماره 19، صفحات 32 تا 39.
6
سوزنی، م. و ابراهیمی، ح.،1383. آسکاریازیس در اسب های شیراز و حومه. پژوهش و سازندگی. شماره 62، صفحات 96 تا 97.
7
غلامان، م.، 1392. بررسی آلودگی کرمی دستگاه گوارش اسب های استان خوزستان. پایان نامه دکترای حرفه ای دامپزشکی. شماره 1334. دانشگاه شهید چمران اهواز.
8
Abdullah, D.A.A. and Mohamed, S.A.Y., 2011. Prevalence of non-strongyle gastrointestinal parasites of horses in Riyadh region of Saudi Arabia Saudi. J Biol Sci. Vol. 18, No. 3, pp: 299-303.
9
Ahmed Abdurhman, I.; Nasredin, K.A.; Ahmed Elhag, B.; Hisham, I.S.; El Tigani Ahmed, E.T.A. and Adam Dawoud, A., 2016. A Survey of Seasonal Gastrointestinal Parasitic Infections in Donkeys from a Semiarid Sub-Saharan Region. Sudan Journal of Pathogens. Vol. 16, Article ID 4602751.
10
Carolynn, M.A. and David, W.F., 2007. Controlling common internal parasites of the horse. Division of Agricultural Science and Natural Resources. Oklahoma State University. [Last accessed on].
11
Githiori,J.B.,2004. Evaluation of anthelmintic properties of ethnoveterinary plants preparations used as livestock dewormers by pastoralist and small holder farmers in Kenya. Doctoral dissertation, Department of Biomedical Sciences and Veterinary Publihealth. SLU. Acta universitatis agricultural Sueciae. Veterinaria. pp: 76-173.
12
Pereira, J.R. and Vianna, S.S., 2006. Gastrointestinal parasitic worms in equines in the Paraiba Valley, State of São Paulo, Brazil. Vet Parasitol. Vol. 140, pp: 289-295.
13
Roberto, A.P. and Michaela, S.A., 2015. Questionnaire survey on intestinal worm control practices in horses in Italy. J of equine veterinary science. Vol. 35, pp: 70-75.
14
Tola, M.; Ketema, T. and Firaol, T., 2013. Prevalence of Gastrointestinal Parasites of Horses and Donkeys in and around Gondar Town. Ethiopia Journal of Veterinary Medicine. Vol. 3, pp: 267-272.
15
Wondwossen, B.; Daniel, T. and Abebaw, A., 2016. Study on the Prevalance of Gastrointestinal Helminthes Infection in Equines in and around Kombolcha. School of Veterinary Medicine, Wollo University, Amhara, Ethiopia. Journal of Veterinary Science & Technology.
16
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی کیفیت پروتئین تفاله گوجه فرنگی خام و تخمیری در مقایسه با کنجاله سویا در تغذیه جوجه های گوشتی
این آزمایش جهت تعیین ترکیب شیمیایی و ارزیابی کیفیت پروتئین تفاله گوجه فرنگی خام و تخمیری در تغذیه جوجه های گوشتی انجام شد. مقدار ماده خشک، فیبر، پروتئین خام به ترتیب از 92/96، 35/13، 14/35 در تفاله خام به 91/40، 30/16، 15/54 درصد در تفاله تخمیری تغییر یافت. جمعیت باکتری های اسیدلاکتیک (log10 CFU/g) از 7/53 در تفاله خام به 14/85 در تفاله تخمیری تغییر یافت. آزمایش در قالب طرح کاملاً تصادفی با چهار تیمار شامل جیره فاقد ازت، جیره حاوی کنجاله سویا، جیره حاوی تفاله گوجه فرنگی خام و تخمیری به صورت جیره های نیمه خالص بر روی جوجه ها انجام شد. نسبت راندمان پروتئین، نسبت ویژه پروتئین، راندمان خوراک و افزایش وزن جوجهها بررسی شد. نتایج نشان داد نسبت راندمان پروتئین در سنین 14، 17 و کل دوره پرورش برای تفاله تخمیری به ترتیب برابر با 2/96، 2/72 و 2/70 برای تفاله خام به ترتیب برابر با 2/36، 2/03 و 2/24 و برای کنجاله سویا به ترتیب برابر با 3/06، 3/26 و 3/13 بود (0/05>P). ارزش ویژه پروتئین برای تفاله تخمیری به ترتیب برابر با 3/84، 3/76 و 3/82 و برای تفاله خام به ترتیب برابر با 3/47، 2/92 و 3/28 و برای کنجاله سویا به ترتیب برابر با 4/03، 3/99 و 4/02 بود (0/05>P). اگر چه افزایش وزن و راندمان خوراک در جوجه های تغذیه شده با تفاله تخمیری نسبت به کنجاله سویا کم تر بود ولی این مقادیر نسبت به تفاله خام بالاتر بود (0/05>P). بنابراین با توجه به بهبود کیفیت پروتئین تفاله تخمیری می توان از آن در تغذیه جوجه های گوشتی استفاده نمود.
http://www.aejournal.ir/article_96038_266497ec09d2015ebda478497a67c763.pdf
2019-09-23
69
76
تخمیر
تفاله گوجه فرنگی
جوجه گوشتی
کیفیت پروتئین
محسن
رجب زاده نسوان
moh.ra65@gmail.com
1
گروه تغذیه دام و طیور، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
بهروز
دستار
dastar392@yahoo.com
2
گروه تغذیه دام و طیور، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
تقی
قورچی
ghoorchit@yahoo.com
3
گروه تغذیه دام و طیور، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
امید
عشایری زاده
o_ashayeri@yahoo.com
4
گروه تغذیه دام و طیور، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
مرتضی
خمیری
khomeiri@gau.ac.ir
5
گروه تغذیه دام و طیور، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
جعفری، م.؛ پیر محمدی، ر. و عصری رضایی، س.، 1387. بررسی ارزش پروتئینی تفاله گوجه فرنگی و تاثیر آن بر گلوکز تری گلیسرید و پروتئین تام سرم خون جوجه های گوشتی. پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. شماره 78، صفحات 110 تا 116.
1
صوفی سیاوش، ر. و جانمحمدی، ح.،1383. تغذیه دام. (ترجمه). انتشارات عمیدی. صفحات 7 تا 697.
2
غفوریان راد، م.؛ نصیری مقدم، ح.؛ کرمانشاهی، ح. و دانش مسگران، م.، 1390. تعیین انرژی قابل متابولیسم، کیفیت پروتئین و ترکیب شیمیایی پودر خون در جوجه های گوشتی و خروس های بالغ لگهورن. نشریه پژوهش های علوم دامی ایران. جلد 3، شماره 1، صفحات 15 تا 23.
3
مرتضوی، ف.؛ افشارمنش، م. و امیرتیموری، ا.، 1391. تأثیر استفاده هم زمان روش فرآوری با بخار آب، تغذیه مرطوب و آنزیم بر پارامترهای عملکرد 21روزگی بلدرچین گوشتی. پنجمین کنگره علوم دامی ایران، دانشگاه صنعتی اصفهان. صفحات240 تا 243.
4
Akinfemi, A., 2010. Bioconversion of peanut husk with white-rot fungi: Pleurotus ostreatus and Pleurotus pulmonarius. Livestock Research for Rural Development. Vol. 22, No. 3. Retrieved from http://www.lrrd.org/lrrd22/3/akin22049.html.
5
Akinfemi, A.; Babayemi, O.J. and Jonathan, S.G., 2009. Bioconversion of maize husks by white rot fungi. Revista cietifica Agricola. Vol. 9, pp: 972-978.
6
Akinfemi, A.; Ogunwole, O.A.; Ladipo, M.K.; Adu, O.A.; Osineye, O.M. and Apata, E.S., 2008a. Enhancement of the nutritive value of maize leaf treated with white-rot fungi: Pleurotus sajor caju and Pleurotus pulmonarius, and the effects on chemical composition and in vitro digestibility. Product Agriculture Technology. Vol. 4, pp: 106-114.
7
Al-Betawi, N.A., 2005. Preliminary study on tomato pomace as unusual feedstuff in broiler diets. Pakistan Journal Nutrition. Vol. 4, pp: 57-63.
8
AOAC. 2005. Official Method 978.10. 2005. Official Methods of Analysis of AOAC International, 18th Ed., AOAC International, Gaithersburg, MD.
9
Ashayerizadeh, A.; Dastar, B.; ShamsShargh, M.; Sadeghi Mahoonakb, A. and Zerehdaran, S., 2017. Fermented rapeseed meal is effective in controlling Salmonella enteric serovar Typhimurium infection and improving growth performance in broiler chicks. Veterinary Microbiology. Vol. 201, pp: 93-102.
10
Assi, J.A. and King, A.J., 2008. Manganese amendment and Pleurotus ostreatus treatment to convert tomato pomace for inclusion in poultry feed. Poultry Science. Vol. 87, pp: 1889-1896.
11
Besharati, M.; Taghizadeh, A.; Hossein, J. and Gholam Ali, M., 2008. Evaluation of some by-prouducts using in situ and in vitro gas production techniques. American Journal Animal and Vetrinary Science. Vol. 3, pp: 7-12.
12
Boomgaardt, J. and Baker, D.H., 1971. Tryptophan requirement of growing chicks as affected by dietary protein level. J animal science. Vol. 33, pp: 595-599.
13
Carvalheiro, F.; Roseiro, J.C. and Collaco, M.T.A., 1994. Biological conversion of tomato pomace by pure and mixed fungal cultures. Process Biochemistry. Vol. 29, pp: 601-605.
14
Castanon, F.; Han, Y. and Parsons, C.M., 1990. Protein quality and metabolisable energy of corn gluten feed. Poultry Science. Vol. 69, pp: 1165-1173.
15
Chiang, G.; Lu, W.Q.; Piao, X.S.; Hu, J.K.; Gong, L.M. and Thacker, P.A., 2010. Effects of feeding solid state fermented rapeseed meal on performance, nutrient digestibility, intestinal ecology and intestinal morphology of boiler chickens. Asian-Australasian Journal of Animal Sciences. Vol. 23, pp: 263-271.
16
Dabiri, N.; Ashayerizadeh, A.; Ashayerizadeh, O.; Mirzadeh, K.H.; Roshanfekr, H.; Bojarpour, M. and Ghorbani, M.R., 2009. Comparison effects of several growth stimulating additives on performance responses and microbial population in crop and ileum of broiler chickens on their 21st day of life. Journal of Animal and Veterinary Advances. Vol. 8, pp: 1509-1515.
17
Heres, L.; Engel, B.; vanknapen, F.; deJong, M.C.; Wagenaar, J.A. and Urlings, H.A., 2003. Fermented liquid feed reduces susceptibility of broilers for Salmonella enteritidis. Poultry Science. Vol. 82, pp: 603-611.
18
Hong, K.J.; Lee, C.H. and Kim, S.W., 2004. Aspergillus oryzae GB-107 fermentation improves nutritional quality of food soybeans and feed soybean meals. Journal of Medicine Food. Vol. 7, pp: 430-435.
19
Jazi, V.; Boldaji, F.; Dastar, B.; Hashemi, S.R. and Ashayerizadeh, A., 2017. Effects of fermented cottonseed meal on the growth performance, gastrointestinal microflora population and small intestinal morphology in broiler chickens. British Poultry Science. Vol. 58, pp: 402-408.
20
Kavitha, P.; Ramana, J.V.; Amaprasad, J.R.; Reddy, P.S. and Reddy, P.V.V.S., 2004. Nutrient utilization in broilers fed dried tomato pomace with or without enzyme supplementation. Indian Journal Animal Nutrition. Vol. 21, pp: 17-21.
21
Lateef, A.; Oloke, J.K.; Kana, G.E.B.; Oyeniyi, S.O.; Onifade, O.R.; Oyeleye, A.O.; Oladosu, O.C. and Oyelami, A.O., 2008. Improving the quality of agro-wastes by solid state fermentation: enhanced antioxidant activities and nutritional qualities. World Journal of Microbiology and Biotechnology. Vol. 24, pp: 2369-2374.
22
Michel, W.D. and Parsons, C.M., 1999. Dietary formulation with rendered spent hen meal on a total amino acid versus a digestible amino acid basis. Poultry Science. Vol. 78, pp: 556-560.
23
Niba, A.T.; Beal, J.D.; Kudi, A.C. and Brooks, P.H., 2009. Potential of bacterial fermentation as a biosafe method of improving feeds for pigs and poultry. African J of Biotechnology. Vol.8, pp: 1758-1767.
24
Persia, M.E.; Parsons, C.M.; Schang, M. and Azcona, J., 2003. Nutritional evaluation of dried tomato seeds. Poultry Science. Vol. 82, pp: 53-57.
25
Rahmatnejad, E.; Bojarpour, M.; Islami, M.; Fayazi, J. and Mamouei, M., 2009. Economic value of dried tomato pomace in broiler chicken diets. Research Journal Biological Sciences. Vol. 4, pp: 832-835.
26
Sallam S.M.A.; Nasser, M.E.A.; El-Waziry, A.M.; Bueno, F.C.S. and Abdallah, A.L., 2007. Use of yam in vitro rumen gas Production technique to evaluate some ruminant feedstuffs. Journal Applied Science Research. Vol. 3, pp: 34-41.
27
SAS Institute, SAS Stat User's Guide. 2003. Version. 9.1 edition. SAS Institute Inc, Cary, NC, USA.
28
Shamim, H.M.; Shakhawat Hussain, M.D. and Al Mahin, A., 2016. Soild-state Fermentation of Coconut Coir by Pleurotus sajor-caju increases the anti-oxidant properties and nutritional value. Biotechnology. Vol. 15, pp: 141-147.
29
Shojaosadati, S.A.; Faraidouni, R.; Madadi-Nouei, A. Mohamadpour, I., 1999. Protein enrichment of lignocellulosic substrates by solid state fermentation using Neurospora sitophila. Resources, Conservation and Recycling. Vol. 27, pp: 73-87.
30
Squires, M.W.; Naber, E.C. and Toelle, V.D., 1992. The effects of heat, water, acid and alkali treatment of tomato cannery wastes on growth, metabolisable energy value and nitrogen utilization of broiler chicks. Poultry Science. Vol. 71, pp: 522-529.
31
Sukaryana, Y., 2013. Effect of palm kernel cake-cassava mixed fermentation product used toward broiler carcass weight pieces. Global Journal Biology Agriculture Health Science. Vol. 2, pp: 199-202.
32
Ventura, M.R.; Pieltain, M.C. and Castanon, J.I.R., 2009. Evaluation of tomato crop by-products as feed for goats. Animal Feed Science and Technology. Vol. 154, pp: 271-275.
33
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر عصاره مالت بر عملکرد رشد و خصوصیات لاشه جوجههای گوشتی
عصاره مالت، دارای فعالیت آنتی اکسیدانی در شرایط برون تنی و درون تنی میباشد. به منظور بررسی اثر عصاره مالت جو بر عملکرد و خصوصیات لاشه جوجههای گوشتی، 180 قطعه جوجه یک روزه گوشتی خریداری و به طور تصادفی به 4 گروه مساوی و هر گروه به 3 زیر گروه 15 قطعه ای تقسیم شدند. جوجه های گروه A، B و C به ترتیب عصاره مالت جو را به میزان 0/2، 0/3 و 0/5 درصد به صورت روزانه در آب آشامیدنی و در کل دوره پرورش به مدت 42 روز دریافت نمودند. جوجه های گروه D به عنوان گروه شاهد، عصاره مالت جو را دریافت نکردند. در 21 روزگی و در پایان دوره، میزان خوراک مصرف شده، افزایش وزن و ضریب تبدیل غذایی برای هر گروه محاسبه گردید. به منظور تعیین خصوصیات لاشه، در پایان دوره 2 قطعه از هر تکرار کشتار گردید. این مطالعه نشان داد افزودن عصاره مالت در آب مصرفی بر ضریب تبدیل غذایی، درصد لاشه، چربی احشایی، وزن چینه دان، سنگدان، پانکراس، کبد و قلب در مقایسه با گروه شاهد تأثیری ندشت.
http://www.aejournal.ir/article_96197_9a18a000ce9e77751d968a5bdb36bfa8.pdf
2019-09-23
77
84
عصاره مالت
عملکرد رشد
خصوصیات لاشه
جوجه گوشتی
فروغ
طلازاده
ftalazade@gmail.com
1
بخش بیماری های طیور، گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
منصور
میاحی
m_mayahi@yahoo.com
2
بخش بیماری های طیور، گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
فهیمه
سلیمانخانی
fsoleimankhani@yahoo.com
3
بخش بیماری های طیور، گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
Bamforth, C.W.; Muller, R.E. and Walker, M.D., 1993. Oxygen and oxygen radicals in malting and brewing: a review. Journal of the Science of Food and Agriculture. Vol. 51, pp: 79-88.
1
Bonoli, M.; Verardo, V.; Marconi, E. and Caboni, M.F., 2004. Antioxidant phenols in barley (Hordeum vulgare L.) flour: Comparative spectrophotometric study among extraction methods of free and bound phenolic compounds. Journal of Agriculture and Food Chemistry. Vol. 52, pp: 5195-5200.
2
Carvalho, D.O.; Goncalves, L.M. and Guido, L.F., 2016. Overall antioxidant properties of malt and how they are influenced by the individual constituents of barley and the malting process. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety. Vol. 15, pp: 927-943.
3
Enari, T.M.; Puputti, E. and Mikola, J., 1963. Fractionation of the proteolytic enzymes of barly and malt. European Brewery Conv., Proc. Conger. 9th, Brussels. pp: 37-44.
4
Hashemi, S.R. and Davoodi, H., 2010. Phytogenic as new class of feed additive in poultry industry. Journal of Animal and veterinary Advances. Vol. 9, pp: 2295-2304.
5
Helland, M.H.; Wicklund, T. and Narvhus J.A., 2004. Growth and metabolism of selected strains of probiotic bacteria in milk. International Journal of Food Microbiology. Vol. 91, pp: 305.
6
Hoopen, H.J.G., 1967. The proteolytic Enzyme of Barley and malt. I. Extraction of Peptide Hydrolases (Endopeptidases) with activity at pH 5 from malt. Laboratory of General and Technichal Biology, Technological University, Delft, The Netherlands.
7
Jamroz, D.; Wiliczkiewicz, A.; Wertelecki, T.; Orda, J. and Skorupinska, J., 2005. Use of active substances of plant origin in chicken diets based on maize and locally grown cereals. BritishPoultry Science. Vol. 46, pp: 485-493.
8
Manzanillo, E.G.; Baucelis, F.; Kamel, C.; Morales, J.; Perez, J.F. and Gass, J., 2001. Effects of plant extracts on the performance and lower gut microflora of early weaned piglets. Journal of Animal Science. Vol. 1, pp: 473-476.
9
Marhamatizadeh, M.H.; Karmand, M.; Farokhi, A.R.; Rafatjoo, R. and Rezazadeh, S., 2011. The Effects of Malt Extract on the Increasing Growth of Probiotic Bacteria Lactobacillus acidophilus and Bifidobacterium bifidum in probiotic Milk and Yoghurt. Food Technology and Nutrition. Vol. 8. [In Persian]
10
McDowell, L.R., 2000. Vitamins in animal and human nutrition. Lowa state University press. Vol. 88, pp: 5-15.
11
Mitsch, P.K.; Kohler, Z.B.; Gabler, C.; Losa, R. and Zimpermik, I., 2004. The effects of two different blends of essential oil components on the proliferation of clostridium perfringens in the intestines of broiler chickens. Poultry Science. Vol. 83, pp: 669-675.
12
Platel, K. and Srinivasan, K., 2001. Studies on the influence of dietary spices on food transit time in experimental rat. Nutrition Research. Vol. 21, pp: 1309-1314
13
Qingming, Y.; Xianhui, P.; Weibao, K.; Hong, Y.; Yidan, S. and Zhang, L.,2010. Antioxidant activities of malt extract from barley (Hordeum vulgare L.) toward various oxidative stress in vitro and in vivo. Food Chemistry. Vol. 118, pp: 84-89.
14
Sanders, J.W.; Venema, G. and Kok, J., 1999. Effect of fermentation on lactose, glucose, and maltose in milk and suitability of fermented milk products for lactose intolerant individuals. Journal of Dairy Science. Vol. 23, pp: 483.
15
Ultee, A., 2002. The phenolic hydroxyl group of carvacrol is essential for action against the food-borne pathogen Bacillus cereus. Environmental Microbiology. Vol. 68, pp: 1561-1568.
16
Xu, J. and Zhou, F., 2008. The antibacterial mechanism of cervacrol and thymol against Escherichia coli. Applied Microbiology. Vol. 47, pp: 174-149.
17
Zhao, H.F.; Dong, J.J.; Lu, J.; Chen, J.; Li, Y. and Shan, L.J., 2006. Effects of extraction solvent mixtures on antioxidant activity evaluation and their extraction capacity and selectivity for free phenolic compounds in barley (Hordeum vulgare L.). Journal of Agriculture and Food Chemistry. Vol. 54, pp: 7277-7286.
18
Zubtsov,Y.N.;Eremina,O.Y. andSeregina,N.V., 2017. The micronutrient value of byproducts of malting barley. Voprosy pitaniia. Vol. 86, pp:115-120·
19
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه اثر سطوح مختلف ویتامین 3 D جیره ای بر فراسنجه های تولیدی و کیفیت تخم در بلدرچین ژاپنی
هدف از مطالعه حاضر، بررسی اثر سطوح صفر، ۱۰۰۰، ۲۰۰۰، ۴۰۰۰ و ۸۰۰۰ واحد بین المللی ویتامین 3 D افزوده شده به هر کیلوگرم جیره پایه بر خصوصیات تولیدی و کیفیت تخم بلدرچین ژاپنی بود. تعداد ۳۲۰ قطعه بلدرچین ژاپنی بالغ در قالب طرح بلوک کامل تصادفی با ۵ تیمار، ۴ تکرار و ۱۶ قطعه بلدرچین در هر تکرار (۱۲ قطعه ماده و ۴ قطعه نر)، به مدت ۴۲ روز به کار رفت. بعد از ۲ هفته تغذیه از جیره های آزمایشی، عملکرد تولیدی پرنده ها برای مدت ۶ هفته ثبت شد. در پایان دوره از هر تکرار ۵ تخم به طور تصادفی انتخاب و صفات کیفی تخم بررسی گردید. ضریب تبدیل غذایی، درصد وزن پوسته، عرض تخم و قطر سفیده رقیق تحت تأثیر سطوح ویتامین 3 D قرار گرفتند (0/05>P). هرچند که مقدار این فراسنجه های کیفی تخم در تیمارهای آزمایشی اختلاف معنی داری با شاهد نداشتند، اما درصد وزن پوسته و عرض تخم با افزایش سطح ویتامین 3 D از 4000 (به ترتیب 15/90 و 2/67) به 8000 (به ترتیب 14/41 و 2/51) واحد بین المللی، کاهش یافتند (0/05>P). ضریب تبدیل غذایی در تیمار 4000 واحد ویتامین D3) 3/68) کم تر از شاهد (4/22) بود (0/05>P). دیگر صفات کیفی تخم و نیز مقدار خوراک مصرفی، تولید و وزن تخم تحت تاثیر تیمارهای آزمایشی قرار نگرفتند (0/05<P). نتایج مطالعه حاضر بهبود ضریب تبدیل غذایی و درصد وزن پوسته و عرض تخم را به خصوص در سطح ۴۰۰۰ واحد ویتامین D در کیلوگرم جیره بلدرچین ژاپنی نشان می دهد.
http://www.aejournal.ir/article_96225_5d6e13a0c41a8aa90aee14d82b5d8012.pdf
2019-09-23
85
92
بلدرچین ژاپنی
صفات تولیدی
ویتامین 3 D
سحر
فتاحی
s.fatahi1992@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، اهواز، ایران
AUTHOR
صالح
طباطبائی وکیلی
s_tabatabaei58@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
مرتضی
مموئی
mamouei_m@yahoo.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، اهواز، ایران
AUTHOR
علی
آقائی
ali_aghaei110@gmail.com
4
گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و صنایع غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، اهواز، ایران
AUTHOR
رنجبر، م.؛ علیخانی، ص.؛ میرقلنج، س. و دقیق کیا، ح.، ۱۳۹۴. تخمین برخی پارامترهای ژنتیکی و فنوتیپی صفات کیفی مربوط به تخم مرغ در مرغان بومی آذربایجان. پژوهش های علوم دامی. جلد ۲۵، شماره ۴، صفحات ۱۱۷ تا ۱۲۸.
1
ساکی، ع.ا.؛ حقی، م. و رحمت نژاد، ع.، 1393. تأثیر سطوح مختلف متیونین و پروتئین جیره بر تولید و خصوصیات تخم مرغ مرغ های تخم گذار در اواخر دوره تخم گذاری. پژوهش های تولیدات دامی. جلد10، صفحات 13 تا 25.
2
کاظمی فرد،م.؛ کرمانشاهی، ح.؛ رضایی، م. و گلیان، ا.، ۱۳۹۳. اثر عصاره رازیانه و ویتامین 3 D بر جوجه درآوری و خصوصیات کیفی جوجه در مرغ های مادر گوشتی پس از تولک بری. پژوهش های علوم دامی ایران. جلد ۶، شماره ۳، صفحات 197 تا 207.
3
متقی طلب، م. و هرمزدی، م.، ۱۳۹۲. اثر جایگزینی ویتامین کوله کلسیفرول با ۱ـ آلفا هیدروکسی کوله کلسیفرول بر عملکرد مرغ های مادر گوشتی مسن. مجله تحقیقات دام و طیور. جلد ۲، شماره ۲، صفحات 37 تا 46.
4
Afsharmanesh, M. and Pourreza, J., 1999. Response of laying hens to calcium & vitamin D3 supplementation manipulation.Journal of science and technology of agriculture and natural resources. Vol. 3, No. 3, pp: 105-113.
5
Afsharmanesh,M.;Pourreza,J.andSamie, A., 2001. Effect of different levels of calcium & vitamin D3 on eggshell quality traits.Journal of science & technology of agriculture & natural resources. Vol. 5, No. 2, pp: 147-156.
6
Afshar, M.; Shyvazad, M.; Miraei Ashtiani, S. and Tavakkolian, J., 2007. The effect of vitamin supplements on laying hens performance. Pajouhsh Sazandegi. Vol. 73, pp: 162-167.
7
Anonymous, M., 1992. Hy-Line Variety W-36 Management Guide, 4th Ed. Hy-Line International, West Des. Monines, IA. 50265.
8
Atencio A.; Edwards, H.M.; Pesti, G.M. and Ware, G.O., 2006. The vitamin D3 requirement of broiler breeders. Poultry Science. Vol. 85, pp: 674-692.
9
Buckner, G.D. and Martin, J.H., 1920. Effect of calcium on the composition of the eggs of laying hens. Journal of Biological Chemistry. Vol. 41, pp: 195-203.
10
Castro, L.C.G., 2011. O sistema endocrinológico Vitamina D. Arquivo Brasileiro de Endocrinologia e Metabologia. Vol. 55, No. 8, pp: 566-575.
11
Chaksari, I.; Zagheri, M. and khalaji, S., 2015. Effects of 1α-OH-D3 on broiler chickens performance. Iranian Journal of Animal Science. Vol. 44, No. 1, pp: 23-33.
12
Elsherif, H.M.R., 2016. Effect of high levels of fat soluble vitamins before and during egg production on productive performance of brown laying hens. Egyptian Poultry Science Journal. Vol. 36, No. 4, pp: 1021-1030.
13
Goodson Williams, R.; Roland, D.A. and Mcguire, J.A., 1986. Effect of feeding grade level of vitamin D3 on egg shell pimpling in aged hens. Poultry Science. Vol. 65, pp: 1556-1560.
14
Henry, H. and Norman, A.W., 1975. Presence of renal 25-hydroxyvitamin D-1-hydroxylase in species of all vertebrate classes. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 50 B, pp: 431-434.
15
Hernandez, M.G.; Lopez, R.M. and Gonzalez, E.A., 2001. Mejoramiento de la calidad del cascarón con 25 hidroxicolecalciferol [25 -(OH) D3] en dietas de gallinas de primero y segundo ciclos. Veterinária México. Vol. 32, pp: 167-174.
16
Hartmann, C.; Johansson, K.; Strandberg, E. and Wilhelmson, M., 2000. One generation divergent selection on large and small yolk proportion. British Poultry Science. Vol. 41, pp: 280-286.
17
Keshavarz. K., 1996. The effect of different levels of vitamin C and cholecalciferol with adequate or marginal levels of dietary calcium on performance and egg shell quality of laying hens. Poultry Science. Vol. 75, pp: 1227-1235.
18
Luck, M.R. and Scanes, C.G., 1979. The relationship between reproductive activity and blood calcium in the calcium deficient hen. British Poultry Science. Vol. 20, pp: 559-564.
19
Nascimento, G.R.; Murakami, A.E.; Guerra, A.F.Q.M.; Ospinas-Rojas, I.C.; Ferreira, M.F.Z. and Fanhani, J.C., 2014. Effect of different vitamin D sources and calcium levels in the diet of layers in the second laying cycle. Revista Brasileira de Ciência Avícola. Vol. 16, No. 2, pp: 37-42.
20
Panda, A.K.; Rao, S.R.; Raju, M.V.L.N.; Niranjan, M. and Reddy, B.L.N., 2006. Influence of supplemental vitamin D3 on production performance of aged white Leghorn layer breeders and their progeny. Aslan Australasian Journal of Animal Scennces. Vol. 19, No. 11. 1638 p.
21
Plaimast, H.; Kijparkorn, S. and Ittitanawong, P., 2015. Effects of vitamin D3 and calcium on productive performance, egg quality and vitamin D3 content in egg of second production cycle hens. Thai Journal of Veterinary Medicine. Vol. 45, No. 2, pp: 189-195.
22
Rafael, H.M.; Rodrigo, A.G.; Janaina, D.T.; Josiane, R.; Juliana, P.; Fabricio, H.H.; Sandra, A.Q. and Vera, M.B.M., 2011. Effect of supplementation of diets for quails with vitamins A, D and E on performance of the birds and quality and enrichment of eggs. Revista Brasileira de Zootecnia. Vol. 40, No. 6, pp: 1222-1232.
23
Salvador, D.; Faria, D.E.D.; Mazalli, M.R.; Ito, D.T.; Faria Filho, D.E.D. and Araújo, L.F., 2009. Vitaminas D e C para poedeiras na fase inicial de produção de ovos. Revista Brasileira de Zootecnia. Vol. 38, No. 5, pp: 887-892.
24
Saunders-Blades, J.L. and Korver, D.R., 2014. The effect of maternal vitamin D source on broiler hatching egg quality, hatchability, and progeny bone mineral density and performance. The Journal of Applied Poultry Research. Vol. 23, pp: 773-783.
25
Saunders-Blades, J.L. and Korver, D.R., 2015. Effect of hen age and maternal vitamin D source on performance, hatchability, bone mineral density, and progeny in vitro early innate immune function. Poultry Science. Vol. 94, No. 6, pp: 1233-1246.
26
Stevens, V.I.; Blair, R. and Salmon, R.E., 1984. Influence of maternal vitamin D3 carry-over on Kidney 25-hydroxylase activity of poults. Poultry Science. Vol. 63, pp: 760-764.
27
Soares, J.H.; Kaetzel, D.M.; Allen, J.T. and Swerdel, M.R., 1983. Toxicity of a vitamin D steroid to laying hens. Poultry Science. Vol. 62, pp: 24-29.
28
Safa, H.M.; Serrano, M.P.; Valencia, D.G.; Arbe, X.; Jimenez-Moreno, E.; Lazaro, R. and Mateos, G.G., 2008. Effects of the levels of methionine linoleic acid and added fat in the diet on productive performance and egg quality of brown laying hens in the late phase of production. Poultry Science. Vol. 87, pp: 1595-1602.
29
Tsang, C.P.W. and Grunder, A.A., 1984. Effects of vitamin D3 deficiency in estradiol-17ß metabolism in the laying hens. Endocrinology. Vol. 115, pp: 2170-2175.
30
Turgut, L.; Hayirli, A.; Celebi, S.; Yoruk, M.A.; Gul, M.; Karaoglu, M. and Macit, M., 2006. The effects of vitamin D supplementation to peak-producing hens fed diets differing in fat source and level on laying performance, metabolic profile, and egg quality. Asian Australaslan Journal of Animal Sciences. Vol. 19, No. 8, 1179 p.
31
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه لانه گزینی و صفات تولیدمثلی لاک پشت عقابی (Eretmochelys imbricata) در منطقه حفاظت شده مند، استان بوشهر
لاکپشت منقارعقابی یکی از گونه های مهم و به شدت درخطر انقراض می باشد. در مطالعه حاضر شرایط اکولوژی و زیست شناسی تولیدمثل این گونه در جزیره ام الگرم واقع در منطقه حفاظت شده مند در سال 1396 بررسی شد. طی مراحل پایش 110 نمونه لاک پشت زیست سنجی گردید که 41 لاک پشت لانه گزینی موفق داشتند. براساس نتایج به دست آمده میانگین طول، عرض و عمق لانه به ترتیب 16/56±110/76 ، 11/90±99/45 و 8/5±55/3 ثبت گردیدند. میانگین طول و عرض منحنی کاراپاس مولدین به ترتیب 3/75±70/25 و 3/08±64/72 سانتی متر، میانگین تعداد کل تخم های تولید شده 11/5±108 بود و میانگین تعداد، قطر و وزن تخم طبیعی به ترتیب 3/9±74 عدد، 2/1±37/9 میلی متر و 3/82±28/85 گرم و میانگین تعداد، قطر و وزن تخم غیرطبیعی به ترتیب 6/25±26/9 عدد، 2/1±20/6 میلی متر و 3/85±11/1 گرم اندازه گیری شد. میانگین طول و عرض مستقیم و وزن نوزادان به ترتیب 1/97±38/1 و 1/45±29/95 سانتی متر 0/97±12/4 گرم ثبت شد. دوره انکوباسیون، درصد تفریخ تخم ها و میانگین تعداد تخم های دارای جنین مرده به ترتیب 14/9±62/5 روز، 14/9±52/45 درصد 6/4±19/4 به دست آمد. نتایج نشان داد که لاک پشت های جزیره امالگرم در برخی از صفات تولیدمثلی مشابه سایرمناطق خلیج فارس هستند اما نسبت به سایر نقاط دنیا اندازه کوچک تر دارند. میانگین تعداد تخم تولید شده در این جزیره بالاتر از سایر نقاط خلیج فارس و نزدیک به میانگین جهانی بود.
http://www.aejournal.ir/article_96305_f1db98e77e5a14e2e24856896595052c.pdf
2019-09-23
93
100
لاک پشت های منقار عقابی
حفاظت
صفات تولیدمثلی
ام الگرم
هاله
رزاقیان
ha.razaghian@gmail.com
1
گروه محیط زیست، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
LEAD_AUTHOR
مجید
عسکری حصنی
mahesni@gmail.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید باهنر، کرمان، ایران
AUTHOR
بهمن
شمس اسفند اباد
bshams1357@gmail.com
3
گروه محیط زیست، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
AUTHOR
رضا
وفایی شوشتری
r-vafaei@iau-arak.ac.ir
4
گروه محیط زیست، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
AUTHOR
حمید
ترنج زر
h-toranjzar@iau-arak.ac.ir
5
گروه محیط زیست، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
AUTHOR
دهقانی، ه.؛ کشاورز، م.؛ کامرانی، ا.؛ مهوری، ع. و اسدی، م.، 1391. بررسی زیست شناسی تخم گذاری لاک پشت دریایی منقار عقابی (Eretmochelys imbricata,Linnaeus 1766) در جزیره هرمز-خلیج فارس. نشریه اقیانوس شناسی. سال 3، شماره 9، صفحات 1 تا 9.
1
زارع، ر.؛ نبوی، م.ب.؛ فداکار، ش. وافتخارواقفی، م.، 1388. بررسی فعالیت لانه گذاری لاک پشت منقار عقابی (Eretmochelys imbricata) در جزیره شیدور (استان هرمزگان) فصلنامه زیست شناسی جانوری. سال 1، شماره 3، صفحات 47 تا 53.
2
سازمان جغرافیایی نیروهای مسلح. 1381. جغرافیای جزایر ایرانی خلیج فارس: استان بوشهر (جزایر خارک، خارکو، شیف، ام الکرم، جبرین، نخیلو، فارسی). تهران، سازمان جغرافیایی نیروهای مسلح. 320 صفحه.
3
طبیب، م.، 1393. بررسی خصوصیات تولیدمثلی لاک پشت منقار عقابی (Eretmochelys imbricata) سواحل جزیره کیش. مجله پژوهش های جانوری (مجله زیست شناسی ایران). جلد 27، شماره 3، صفحات 377 تا 385.
4
عسکری حصنی، م.، 1394. احیاء و بازسازی زیستگاه های تخم گذاری لاک پشت های دریایی در استان بوشهر با تاکید بر جزایر نخیلو، ام الگرم و خارگو و پارک ملی نایبند. گزارش طرح، سازمان حفاظت محیط زیست، تهران.
5
عسکری حصنی، م.؛ موذنی، م.؛ طلاب، م.ا.؛ شجاعی لنگری، م.؛ قربانزاده زعفرانی ق.؛ جعفری، ح.؛ طالبی متین، م.؛ زنگی آبادی، س.؛ طبیب، م.؛ توسل پور، ا.؛ غلامی زرندی، ع. و فضل آبادی، ص.، 1393. بررسی زیست شناسی تولیدمثل لاک پشت منقار عقابی (Eretmochelys imbricata) در منطقه حفاظت شده نایبند. نشریه فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان. سال 2، شماره 4، صفحات 67 تا 82.
6
لقمانی، م.؛ سواری، ا.؛ مبارکی، ا. و صادقی، پ.، 1389. بررسی لانه گزینی لاک پشت منقار عقابی (Eretmochelys imbricata) در سواحل جزیره هرمز. مجله پژوهش های جانوری (مجله زیست شناسی ایران). جلد 23، شماره 6، صفحات 884 تا 892.
7
مقیمی، م.؛ نقاش، ح.؛ آلهورشید، م.؛ چوی، ر. و قاسمی، ص.، 1389. بررسی زیستگاه و خصوصیات زیست سنجی لاک پشت گونه نوک عقابی(Eretmochelys imbricata) در تالاب های ساحلی خلیج فارس جزیره نخیلو، استان بوشهر. مجله تالاب. سال 2، شماره 3، صفحات 14 تا 25.
8
ولوی،ح.،1373. تخم گذاری لاک پشت های عقابی در جزایر حفاظت شده مند. فصلنامه محیط زیست. شماره 25، صفحات 2 تا 8.
9
Askari Hesni, M.; Tabib, M. and Ramaki, A.H., 2016. Nesting ecology and reproductive biology of the hawksbill turtle, Eretmochelys imbricata, at Kish Island, Persian Gulf. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. Vol. 96, No. 7, pp: 1373-1378.
10
Bjorndal, K.A.; Carr, A.; Meylan, A.B. and Mortimer. J.A., 1985. Reproductive Biology of the Hawksbill (Eretmochelys imbricata) at Tortuguero, Costa Rica, with notes on the ecology of the species in the caribbean. Biological Conservation. Vol. 34, No. 4, pp: 353-368.
11
Chan, E.H. and Liew, H.C., 1999. Hawksbill turtles, Eretmochelys imbricata, nesting on Redang Island, Malaysia, from 1993-1997. Chelonian Conservation and Biology. Vol. 3, No. 2, pp: 326-329.
12
Dobbs, K.A.; Miller, J.D.; Limpus, C.J. and Landry, Jr, A.M., 1999. Hawksbill turtle, Eretmochelys imbricata, nesting at Milman Island, Northern Great Barrier Reef, Australia. Chelonian Conservation and Biology. Vol. 3, No. 2, pp: 344-361.
13
Ecology of the species in the Caribbean. Biological Conservation. Vol. 34, pp: 353-368.
14
Henderson, A.C. and Nash, M., 2013. Confirmation of recent hawksbill turtle Eretmochelys imbricata nesting activity on South Caicos, Turks and Caicos Islands. Marine Biodiversity Records. Vol. 6, pp: 1-4.
15
Horrocks, J.A.; Vermeer, L.A.; Krueger, B.; Coyne, M.; Schroeder, B. and Balazs, G., 2001. Migration routes and destination characteristics of post‐nesting hawksbill turtles satellite tracked from Barbados, West Indies. Chelonian conserv biology. Vol. 4, No. 1, pp: 1‐7.
16
International Union for the Conservation of Nature (IUCN). 2018. Red list of Threatened Species; http://www.iucnredlist.org.
17
Limpus, C.J.; Miller, J.D. and Chatto, R., 2000. Distribution and abundance of marine turtle nesting in northern and eastern Australia. In Australian hawksbill turtle population dynamics project. Final report. A project funded by the Japan Bekko Association. (Limpus, C.J. and Miller, J.D., Eds.) pp: 19-38.
18
Pilcher, N.J.; Antonopoulou, M.; Perry, L.; Abdel Moati, M.A.; Al Abdessalaam, T.Z.; Albeldawi, M.; Al Ansi, M.; Al-Mohannadi, S.F.; Al Zahlawi, N.; Baldwin, R. and Chikhi, A., 2014. Identification of important sea turtle areas (ITAs) for hawksbill turtles in the Arabian Region. Journal of experimental marine biology and ecology. Vol. 460, pp: 89-99.
19
Pritchard, P.C.H. and Mortimer, J.A., 1999. Taxonomy, External Morphology, and Species Identification, pp: 21- 38. In: Eckert, K.L.; Bjorndal, K.A.; Abreu, F.A.G. and Donnelly, M.A., (eds.), Research and Management Techniques for the Conservation of Sea Turtles. IUCN/SSC Marine Turtle Specialist Group Publ. No. 4. Washington, D.C.
20
Sinaei, M.; Bolouki, M.; Ghorbqanzadeh-Zaferani, G.; Matin, M.T.; Alimoradi, M. and Dalir, S., 2018. On a Poorly Known Rookery of Green Turtles (Chelonia mydas) Nesting at the Chabahar Beach, Northeastern Gulf of Oman. Russian Journal of Marine Biology. Vol. 44, No. 3, pp: 254-261.
21
Tayab, M.R. and Quiton, P., 2003. Marine turtle conservation at Ras Laffan Industrial City, Qatar. Marine Turtle Newsletter. Vol. 99, pp: 14-16.
22
Troëng, S.; Dutton, P.H. and Evans, D., 2005. Migration of hawksbill turtles Eretmochelys imbricata from Tortuguero, Costa Rica. Ecography. Vol. 28, pp: 394-402.
23
U.A.E. Fish and Wildlife. 2001. Endangered species program; sea turtles, United Arab Emirates.
24
Wood, A.; Booth, D.T. and Limpus, C.J., 2014. Sun exposure, nest temperature and loggerhead turtle hatchlings: Implications for beach shading management strategies at sea turtle rookeries. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 451, pp: 105-114.
25
Wood, D.W. and Bjorndal, K.A., 2000. Relation of temperature, moisture, salinity, and slope to nest site selection in loggerhead sea turtles. Copeia. Vol. 1, pp: 119-128.
26
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی مطلوبیت زیستگاه (Lacerta media (Reptilia: Sauria در ایران
ارزیابی زیستگاه مناسب برای پراکنش جانوران یکی از راه های دستیابی به اهداف حفاظت از تنوع زیستی می باشد. در مطالعه حاضر، مطلوبیت زیستگاه سوسمار سه خط مورد ارزیابی قرار گرفته است. طبق نتایج به دست آمده از تحلیل حداکثر بی نظمی (Maximum Entropy)، نواحی شمال غرب و غرب ایران به عنوان مناطق مساعد برای حضور گونه پیش بینی شده است. هم چنین نقاطی از حضور گونه در استان های البرز، آذربایجان شرقی، مرکزی و اصفهان ارائه شده بود در مطالعه حاضر خارج از محدوده مساعد حضور قرار گرفته اند. میزان بارندگی در سردترین فصل سال با نقش بیش از 40% در پیش بینی مطلوبیت زیستگاه، به عنوان مهم ترین عامل در حضور لاسرتای سه خط شناخته می شود. عدم پیش بینی نواحی فلات مرکزی و استان آذربایجان شرقی برای حضور این گونه را می توان با کاهش میزان بارندگی زمستانه در سال های اخیر دانست، هم چنین از بین رفتن زیستگاه و باغات در دره ها که مناسب ترین زیستگاه را برای آن شامل می شد، از عوامل کاهش اندازه جمعیت آن به شمار می روند. با بررسی عوامل تأثیرگذار بر پراکنش گونه و یافتن نواحی جدید مساعد حضور گونه می توان از خطر انقراض آن در محیط جلوگیری نمود.
http://www.aejournal.ir/article_96382_14310b5f0a3408266255409e4bdadf0a.pdf
2019-09-23
101
104
Lacerta media
Lacertidae
بارندگی زمستانه
تخریب زیستگاه
دخالت انسانی
ناصر
سنچولی
sancholi.naser94@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه زابل، زابل، ایران
LEAD_AUTHOR
کفاش، ا. و یوسفی، م.، 1396. اثرات منفی تغییرات اقلیمی آینده بر لاسرتاهای کوه زی ایران. نشریه محیط زیست طبیعی (منابع طبیعی ایران). سال 70، شماره 1، صفحات 149 تا 160.
1
Ananjeva, N.B.; Golynsky, E.A.; Hosseinian Yousefkhani, S.S. and Masroor, R., 2014. Distribution and environmental suitability of the small scaled rock agama, Paralaudakia microlepis (Sauria: Agamidae) in the Iranian Plateau. Asian Herpetol Res. Vol. 5, No. 3, pp: 161-167.
2
Bickford, D.; Howard, S.D.; Ng, D.J. and Sheridan, J.A., 2010. Impacts of climate change on the amphibians and reptiles of Southeast Asia. Biodiversity and conservation. Vol. 19, No. 4, pp: 1043-1062.
3
Hijmans, R.J.; Cameron, S.E.; Parra, J.L.; Jones, P. G. and Jarvis, A., 2005. Very high resolution interpolated climate surfaces for global land areas. International journal of climatology. Vol. 25, No. 15, pp: 1965-1978.
4
Hosseinian Yousefkhani, S.S.; Ficetola, G.F.; Rastegar-Pouyani, N.; Ananjeva, N.B.; Rastegar Pouyani, E. and Masroor, R., 2013. Environmental suitability and distribution of the Caucasian Rock Agama, Paralaudakia caucasia (Sauria: Agamidae) in western and central Asia. Asian Herpetol Res. Vol. 4, No. 3, pp: 207-213.
5
Peterson, A.T. and Soberón, J., 2012. Species distribution modeling and ecological niche modeling: getting the concepts right. Natureza and Conservação. Vol. 10, No. 2, pp: 102-107.
6
Sasaki, K.; Lesbarrères, D.; Watson, G. and Litzgus, J., 2015. Mining‐caused changes to habitat structure affect amphibian and reptile population ecology more than metal pollution. Ecological applications. Vol. 25, No. 8, pp: 2240-2254.
7
Šmid, J.; Moravec, J.; Kodym, P.; Kratochvíl, L.; Hosseinian Yousefkhani, S.S. and Frynta, D., 2014. Annotated checklist and distribution of the lizards of Iran. Zootaxa. Vol. 3855, No. 1, pp: 1-97.
8
Warren, D.L.; Glor, R.E. and Turelli, M., 2010. ENMTools: a toolbox for comparative studies of environmental niche models. Ecography. Vol. 33, No. 3, pp: 607-611.
9
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی صفات مورفومتریک و شمارشی گکوی سنگی تیغه دار (Cyrtopodion scabrum) در استان گلستان
سوسماران در چرخههای زیستی نقش مهمی دارند و به طور مستقیم یا غیرمستقیم نیز با انسان در ارتباط اند. شناسایی فون هر منطقه از ضروری ترین و مهم ترین تحقیقات زیستی و پایهای در آن منطقه می باشد. استان گلستان به دلیل جایگاه جغرافیایی ویژه که دارد، دارای آب و هوای گوناگونی است. در این تحقیق تعداد 26 نمونه گکوی سنگی تیغه دار از خرداد 1394 لغایت شهریور 1397 از ایستگاه های مختلف استان گلستان با دست و تور جمع آوری گردید. پس از تهیه عکس، نمونهها در الکل 75% تثبیت و با استفاده از منابع معتبر شناسایی شدند. 14 صفت مورفومتریک و 13 صفت مریستیک کلیه نمونهها به دست آمد. جنسیت نمونههای بالغ با مشاهده منافذ پیش مخرجی در نرها و عدم وجود آن در ماده ها و در نهایت با تشریح مختصر نمونه ها و بررسی غدد تناسلی تعیین گردید. دادهها با استفاده از تحلیل توصیفی SPSS (ویرایش 22)، آنالیزهای T-test، کروسکال والیس (Kruskal Wallis Test) و PCA استفاده شد. بر مبنای آمار توصیفی در میانگین صفات در بین نمونههای نر و ماده، تفاوت هایی با اختلاف اندک مشاهده گردید. بر مبنای آنالیز T-testو آزمون کروسکال والیس در صفات مورفومتریک تفاوت معنی داری مشاهده نگردید. اما در صفت مریستیک (منافذ پیش مخرجی) تفاوت معنی دار مشاهده گردید که نشان دهنده دوشکلی جنسی در این گونه می باشد. هم چنین با استفاده از آنالیز PCA مشخص شد که تمایز مشخصی بین جنس نر و ماده براساس صفات مورفومتریک و مریستیک وجود ندارد.
http://www.aejournal.ir/article_96409_b307c3f62136993b892e0f3d71e9381f.pdf
2019-09-23
105
114
مورفومتریک
مریستیک
گکوی سنگی تیغه دار
دوشکلی جنسی
گلستان
امین
فروتن
aminfrotan@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران، صندوق پستی: 155
AUTHOR
حاجی قلی
کمی
hgkami2000@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران، صندوق پستی: 155
LEAD_AUTHOR
علی اکبر
باقریان یزدی
alibagherianyazdi@gmail.com
3
گروه زیست شناسی، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران، صندوق پستی: 155
AUTHOR
احمدی، ل.؛ کمی، ح.ق. و گنجی، ف.، 1392. مقدمه ای بر زیست شناسی گکوی سنگی تیغه دار در استان لرستان (شهرستان کوهدشت). فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 5، شماره 1، صفحات 109 تا 122.
1
آزاد، م. و کمی، ح.ق.، 1395. اولین گزارش گکوی سنگی تیغه دار در استان مازندران. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 4، شماره 4، صفحات 55 تا 61..
2
پارسا، ح. و رستگارپویانی، ن.، 1388. سیستماتیک و پراکندگی جغرافیائی سوسماران استان کهگیلویه و بویراحمد. مجله علوم دانشگاه تهران. جلد 35، شماره 1، صفحات 17 تا 29.
3
حیدری، س.؛ حسنزاده کیابی، ب. و ملاجعفری، خ.، 1386 .بررسی فونستیک مارمولکهای خانگی شهر تهران. پایان نامه دوره کارشناسی ارشد. دانشگاه شهید بهشتی، دانشکده علوم. 142 صفحه.
4
داداشی، ع.؛ کمی، ح.ق. و شجیعی، ه.،1388. اولین گزارش از گکوی سنگی تیغه دار (خزندگان، سوسماران، گکونیده) در استان آذربایجان شرقی. فصلنامه زیست شناسی جانوری. سال 2، شماره 1، صفحات 2 تا 15.
5
رستگارپویانی، ن.؛ جوهری، م. و رستگارپویانی، ا.، 1386. راهنمای صحرایی خزندگان ایران. جلد اول. چاپ دوم. انتشارات دانشگاه رازی. 298 صفحه.
6
نظرخانی، ل.، 1394. مطالعه فونستیک سوسمارهای خانواده Gekkonidae در استان گلستان. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه گلستان، دانشکده علوم. صفحات 56 تا 60.
7
Anderson, S.C., 1999. The Lizard of Iran. Society for the study of amphibians and reptilse, oxford, Ohio. 442 p.
8
Fathnia, B.; Rastegar-Pouyani, N.; Sampour, M.; Bahrami, A.M. and Jaaferi, G., 2009. The lizard fauna of Ilam province, southwestern Iran, Iranian journal of animal biosystematics (IJAB). Vol. 5, No. 2, pp: 65-79.
9
Nasrabadi, R.; Rastegar-pouyani, N.; Rastegar pouyani, E. and Gharzi, A., 2017. A revised key to the lizards of Iran (Reptilia: Squamata: Lacertilia). Zootaxa. Vol. 4227, No. 3, pp: 431-443.
10
Rastegar-pouyani, N.; Kami, H.G.; Rajabzadeh, M.; Shafie, S. and Anderson, S.C., 2008. Annotated checklist of amphibians and reptiles of Iran. Iranian journal of animal biosystematics (IJAB). Vol. 4, No. 1, pp: 43-66.
11
Rastegar-Pouyani, N.; Khosravani, A. and Oraie, H., 2010. A new record of Cyrtopodion scabrum (Heyden, 1837) from the caspian seacoastal region, Guilan province, northern Iran. Herpetology notes. Vol. 3, pp: 61-63.
12
Safaei, B.; Mahroo Ghaffari, H. and Anderson, S.C., 2016. A new genus and species of gekkonid lizard (Squamata: Gekkota: Gekkonidae) from Hormozgan Province with a revised key to gekkonid genera of Iran. Zootaxa. Vol. 4109, No. 4, pp: 428-444.
13
Sharif Khan, M., 2008. Review of the morphology, ecology, and distribution of geckos of the genus Cyrtopodion, with a note on generic placement of Cyrtopodion brachykolon Krysko et al., 2007. Caspian Journal of Environmental Sciences. Vol. 6, No. 1, pp: 79-86.
14
Smid, J.; Moravec, J.; Kodym, P.; Kratochvil, L.; Hosseinian Yousefkhani, S.; Rastegar pouyany, E. and Frynta, D., 2014. Annotated checklist and distribution of the lizards of Iran. Zootaxa. Vol. 3855, No. 1, pp: 1-97.
15
Szczerbak, N.N. and Goulubev, M.L., 1996. The gecko fauna of the USSR and adjacent regions [englished., translated from the Russian by Michael L. Golubev and Sasha A. Malinsky; Alan E, Leviton and George R. Zug, eds]. Society for the study of Amphibibians and reptiles, Ithaca, New York. 232 p.
16
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی فراوانی و شاخصهای تنوع زیستی ماهیان در خور آذینی استان هرمزگان
این مطالعه باهدف شناسایی و تعیین تنوع گونهای ماهیان خور آذینی سیریک در شرق استان هرمزگان به مدت یک سال در سال 1395 انجام شد. نمونه برداری از ماهیان توسط تور ترال قایقی و به صورت فصلی انجام شد. در این بررسی 41 گونه متعلق به 30 جنس و 26 خانواده شناسایی گردید. بیش ترین فراوانی فصلی گونه ها در بهار به Thryssa vitrirostris 45/8%، تابستان leiognathus fasciatus 36/3%، پاییز Gerres filamentosus 20/8% و زمستان leiognathus fasciatus 13/2% تعلق داشت. فراوانی ماهیان در فصل بهار اختلاف معنی داری با سایر فصول داشت (0/05>p). در فصل بهار بیش ترین فراوانی مربوط به گونه های پلانکتون خوار بود و در سایر فصول ماهیان با رژیم غذایی گوشت خواری ریز و شکارچی فراوان تر بودند. در تمامی فصول نمونه برداری خانواده های Leiognathidae، Platycephalidae، Gerreidae، Sillaginidae و Haemulidae مشاهده شدند. بیش ترین و کم ترین میزان شاخص تنوع گونه ای شانون (Shannon-Wiener index) در فصول زمستان (1/33) و بهار (0/86) مشاهده شد. هم چنین بیش ترین میزان شاخص غنای گونه ای(Margalev Richness Index) متعلق به فصول زمستان (4/5) و بهار (2/64) بود و بیش ترین و کم ترین میزان شاخص یکنواختی (Evenness index) نیز به فصول زمستان (0/42) و بهار (0/31) تعلق داشت.
http://www.aejournal.ir/article_97398_ef5780e91032c4dd35a4248544c77407.pdf
2019-09-23
115
126
تنوع زیستی
فراوانی
ماهیان
جنگلهای مانگرو
خور
سیریک
محمدرضا
زاهدی
zahedi_persica@yahoo.com
1
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندر عباس، ایران
LEAD_AUTHOR
علی
سالارپوری
salarpouri@yahoo.com
2
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندر عباس، ایران
AUTHOR
حجت اله
فروغی فرد
foroghifarddddd@yahoo.com
3
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندر عباس، ایران
AUTHOR
کیومرث
روحانی قادیکلایی
roohani2201@yahoo.com
4
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندر عباس، ایران
AUTHOR
مریم
معزی
moezimmmma@yahoo.com
5
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندر عباس، ایران
AUTHOR
عیسی
عبدالعلیان
abdolaian874549@yahoo.com
6
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندر عباس، ایران
AUTHOR
ربانی ها، م.؛ سنجرانی، م.؛ موسوی، س. و عوفی، ف.، 1387. فراوانی و تنوع ایکتیوپلانکتون ها در منطقه گواتر (آب های ساحلی سیستان و بلوچستان). مجله علمی شیلات ایران. جلد 17، شماره 3، صفحات 55 تا 64.
1
مقصودلو،ت.؛ پذیرا، ع.؛ صادق پناهی، ز. و مغدانی، س.، 1392. بررسی تنوع گونه ای ماهیان خورخان و مصب رودخانه مند. مجله علمی پژوهشی زیست شناسی دریا. جلد 5، شماره 18، صفحات 81 تا 90.
2
Adite, A.; ImorouToko, I. and Gbankoto, A., 2013. Fish assemblages in the degraded mangrove ecosystems of the coastal zone, benin, west africa: Implications for ecosystem restoration and resources conservation. Journal of Environmental Protection. Vol. 4, No. 12 ,pp: 14-61.
3
Agoramoorthy, G.; Chen, F.A. and Hsu, M.J., 2008. Threat of heavy metal pollution in halophytic and mangrove plants of tamil nadu, india. Environmental pollution. Vol. 155, No. 2,pp: 320-326.
4
Allen, G.R. and Erdmann, M.V., 2012. Reef Fishes of the East Indies: volumes I-III, Tropical Reef Research. Perth, Australia. Vol. 1-3, No. 3, pp: 22-26.
5
Allen, G.R.; Midgley, S.H. and Allen, M., 2002. Field guide to the freshwater fishes of australia. Western Australian Museum. 394 p.
6
Araujo, Q.; Krause, R; Santana, S; Araujo, T; Mendonça J. and Trindade, A., 2010. Evaluation of heavy metals in mangrove soil of the graciosa river in, brazil. In: International Annual Meetings: Long Beach: CA. 5 p.
7
Arimoro, F.O.; Ikomi, R.B.; Nwadukwe, F.O.; Eruotor, O.D. and Edegbene, A.O., 2014. Fluctuating salinity levels and an increasing pollution gradient on fish community structure and trophic levels in a small creek in the niger delta, nigeria. International Aquatic Research. Vol. 6, No. 4, pp: 187-202.
8
Austin, H.M., 1971. A survey of the ichthyofauna of the mangroves of western puerto rico during december, 1967-August, 1968. Caribbean Journal of Science. Vol. 11, No. 1, pp: 27-39.
9
Bagarinao, T., 1999. Order gonorynchiformes. Chanidae. Milkfish. In: Fao species identification guide for fishery purposes. The living marine resources of the western central pacific. Volume 3. Batoid fishes, chimaeras and bony fishes part 1 (elopidae to linophrynidae). Food and Agriculture Organization of the United Nations. pp: 1822-1824.
10
Bagenal, T., 1978. Methods for assessment of fish production in fresh waters. IBP Handbook No. 3. Blackwell Science Publication. 104 p.
11
Baird, I.G.; Phylavanh, B.; Vongsenesouk, B. and Xaiyamanivong, K., 2001. The ecology and conservation of the smallscale croaker boesemania microlepis (bleeker 1858-59) in the mainstream mekong river, southern laos. Natural History Bulletin of the Siam Society. Vol. 49, pp: 161-176.
12
Barbier, E.B.; Hacker, S.D.; Kennedy, C.; Koch, E.W.; Stier, A.C. and Silliman, B.R., 2011. The value of estuarine and coastal ecosystem services. Ecological monographs. Vol. 81, No. 2,pp: 169-193.
13
Barletta, M.; Barletta‐Bergan, A.; Saint‐Paul, U. and Hubold, G., 2005. The role of salinity in structuring the fish assemblages in a tropical estuary. Journal of fish biology. Vol. 66, No. 1, pp: 45-72.
14
Blaber, S., 1980. Fish of trinity inlet system of north queensland with notes on the ecology of fish faunas of tropical indo-pacific estuaries. Marine and Freshwater Research. Vol. 31, No. 2, pp: 137-146.
15
Blegvad, H. and Løppenthin, B., 1944. Fishes of the Iranian Gulf. Einar Munksgaard, Copenhagen. 247 p.
16
Bolarinwa, J.B.; Fasakin, E.A. and Fagbenro, A.O., 2015. Species composition and diversity of the coastal waters of ondo state, nigeria. International Journal. Vol. 51, No. 4, pp: 213-218.
17
Bonada, N.; Doledec, S. and Statzner, B., 2007. Taxonomic and biological trait differences of stream macroinvertebrate communities between mediterranean and temperate regions: Implications for future climatic scenarios. Global Change Biology. Vol. 13, No. 8, pp: 1658-1671.
18
Cain, R. and Dean, J., 1976. Annual occurrence, abundance and diversity of fish in a south carolina intertidal creek. Marine Biology. Vol. 36, No. 4, pp: 369-379.
19
Carpenter, K.; Krupp, F.; Jones, D. and Zajonz, U., 1997. Fao species identification field guide for fishery purposes. The living marine resources of kuwait, eastern saudi arabia, bahrain, qatar, and the united arab emirates. FAO species identification field guide for fishery purposes. The living marine resources of Kuwait, Eastern Saudi Arabia, Bahrain, Qatar, and the United Arab Emirates. 479 p.
20
Carpenter, K.E., 1997. Living marine resources of kuwait, eastern saudi arabia, bahrain, qatar, and the united arab emirates. Food & Agriculture Org. 477 p.
21
Chao, L.; Weng-jia, H.; Ming-ru, C. and Sheng-yun, Y., 2013. Juvenile fish diversity in shankou mangrove reserve and their recruitment to the fishery. Journal of Xiamen University (Natural Science). Vol. 2.pp: 22-25.
22
Chong, V., 2007. Mangroves-fisheries linkages- the malaysian perspective. Bulletin of Marine Science. Vol. 80, No. 3, pp: 755-772.
23
Cole, A. and Pratchett, M., 2011. Effects of juvenile coral feeding butterflyfishes on host corals. Coral Reefs. Vol. 30, No. 3, pp: 623-630.
24
Crona, B. and Rönnbäck, P., 2007. Community structure and temporal variability of juvenile fish assemblages in natural and replanted mangroves, sonneratia alba sm., of gazi bay, kenya. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 74, No. 1, pp: 44-52.
25
Dantas, D. and Barletta, M., 2016. Habitat use by centropomus undecimalis in a rocky area of estuarine beach in north‐east brazil. Journal of fish biology. Vol. 89, No.1, pp: 793-803.
26
Davari, A.; Danehkar, A.; Khorasani, N. and Javanshir, A., 2010. An investigation on accumulation of heavy metals in roots and leaves of avicennia marina the sediment, bushehr, the persian gulf. Vol. 1, No. 4, pp: 267-277.
27
Dehghani, M., 2014. Study of fish mangrove communities and comparison of traditional fisheries methods in hara biosphere reserve. Marine Biodiversity Records. Vol. 7, 107 p.
28
Fischer, W.; Sousa, I.; Silva, C. de Freitas, A.; Poutiers, J.; Schneider, W.; Borges, T.; Feral, J. and Massinga, A., 1990. Field guide to commercial marine and brackishwater species of mozambique. 230 p.
29
Franco, A.; Franzoi, P.; Malavasi, S.; Riccato, F.; Torricelli, P. and Mainardi, D., 2006. Use of shallow water habitats by fish assemblages in a mediterranean coastal lagoon. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 66, No. 1, pp: 67-83.
30
Giarrizzo, T. and Krumme, U., 2009. Temporal patterns in the occurrence of selected tropical fishes in mangrove creeks: Implications for the fisheries management in north brazil. Brazilian Archives of Biology and Technology. Vol. 52, No. 3, pp: 679-688.
31
Harrison, T. and Whitfield, A., 2006. Temperature and salinity as primary determinants influencing the biogeography of fishes in south african estuaries. Estuarine, Coastal and Shelf Science .Vol. 66, No. 1, pp: 335-345.
32
Hashemi, H., 2006. Determination of degree of sensitivity in mangrove creek protected areas of jask with emphasis of fishes. MSc thesis. Azad University of Bandar Abbas. 122 p.
33
Hindell, J. and Jenkins, G., 2004. Spatial and temporal variability in the assemblage structure of fishes associated with mangroves (Avicennia marina) and intertidal mudflats in temperate australian embayments. Marine Biology. Vol. 144, No. 2, pp: 385-395.
34
Huang, L.; Huang, D.; Wu, Z.;Kang, B. and Chen, Z., 2016. Temporal variation of fish diversity and assemblages and their associations to environmental variables in the mangrove of qinzhou harbor, guangxi province, china. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sicences. Vol. 16, No. 2, pp: 297-310.
35
Islam, M.S. and Haque, M., 2004. The mangrove-based coastal and nearshore fisheries of bangladesh: Ecology, exploitation and management. Reviews in Fish Biology and Fisheries. Vol. 14, No. 2, pp: 153-180.
36
Iwatsuki, Y., 2013. Review of the Acanthopagrus latus complex (perciformes: Sparidae) with descriptions of three new species from the indo‐west pacific ocean. Journal of Fish Biology. Vol. 83, No.1, pp: 64-95.
37
Jalal, K.; Azfar, M.A.; John, B.A.; Kamaruzzaman. Y. and Shahbudin, S., 2012. Diversity and community composition of fishes in tropical estuary pahang malaysia. Pakistan Journal of Zoology. Vol. 44, No.1, pp: 181-187.
38
Janaki-Raman, D.; Jonathan, M.; Srinivasalu, S.; Armstrong-Altrin, J.; Mohan, S. and Ram-Mohan, V., 2007. Trace metal enrichments in core sediments in muthupet mangroves, se coast of india: Application of acid leachable technique. Environmental pollution. Vol. 145, No. 1, pp: 245-257.
39
Jeyaseelan, M.P.; Ramanathan, N. and Vannuci, M., 1998. Manual of fish eggs and larvae from asian mangrove waters. Unesco Pub. 187 p.
40
Jin, B.; Fu, C.; Zhong, J.; Li, B.; Chen. J. and Wu, J., 2007. Fish utilization of a salt marsh intertidal creek in the yangtze river estuary, china. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 73, No. 3, pp: 844-852.
41
Kamrani, E.; Sharifinia. M. and Hashemi, S.H., 2015. Analyses of fish community structure changes in three subtropical estuaries from the iranian coastal waters. Marine Biodiversity. Vol. 46, No. 3, pp: 561-577.
42
Kathiresan, K. and Bingham, B.L., 2001. Biology of mangroves and mangrove ecosystems. Advances in marine biology. Vol. 40, pp: 81-251.
43
Keshavarz, M.; Mohammadikia, D.; Gharibpour, F. and Dabbagh, A.R., 2012. Accumulation of heavy metals (pb, cd, v) in sediment, roots and leaves of mangrove species in sirik creek along the sea coasts of oman, iran. Journal of Applied Sciences and Environmental Management. Vol. 16, No. 4, pp: 323-326.
44
Kouamélan, E.P.; Teugels, G.G.; N'douba, V.G.; Bi, G. and Koné, T., 2003. Fish diversity and its relationships with environmental variables in a west african basin. Hydrobiologia. Vol. 505, No. 1-3, pp: 139-146.
45
Krumme, U.; Brenner, M. and Saint-Paul, U., 2008. Spring-neap cycle as a major driver of temporal variations in feeding of intertidal fishes: Evidence from the sea catfish sciades herzbergii (ariidae) of equatorial west atlantic mangrove creeks. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 367, No. 2, pp: 91-99.
46
Kumar, M.A.; Venu, S. and Padmavati, G., 2016. Habitat ecology and ichthyofaunal diversity of two creeks and their associated streams from port blair, south andaman islands. International Journal of Ecology. Vol. 2016, pp:1-8.
47
Kuo, S.R.; Lin, H.J. and Shao, K.T., 1999. Fish assemblages in the mangrove creeks of northern and southern taiwan. Estuaries. Vol. 22, No. 4, pp: 1004-1015.
48
Laegdsgaard, P. and Johnson, C., 2001. Why do juvenile fish utilise mangrove habitats? Journal of experimental marine biology and ecology. Vol. 257, No. 2, pp: 229-253.
49
Lawson, E.; Doseku, P. and Ajepe, R., 2013. Fish assemblage of majidun creek, lagos, nigeria. Journal of Biological Sciences. Vol. 13, 577 p.
50
Lin, H.J. and Shao, K.T., 1999. Seasonal and diel changes in a subtropical mangrove fish assemblage. Bulletin of Marine Science. Vol. 65, pp: 775-794.
51
Little, M.; Reay, P. and Grove, S., 1988. The fish community of an east african mangrove creek. Journal of Fish Biology. Vol. 32, No. 5, pp: 729-747.
52
Ludwig, J.A. and Reynolds, J.F., 1988. Statistical ecology, a primer in methods and computing. John Wiley & Sons. Vol. 1.
53
Murugan, S.; Khan, S.A.; Lyla, P.; Manokaran, S.; Raja, S. and John, B.A., 2014. Spatial and temporal variability in fish diversity of vellar estuary (south east coast of india). Annual Research & Review in Biology. Vol. 4, No. 13, pp: 2147-2162.
54
Nellen, W., 1973. Kinds and abundance of fish larvae in the arabian sea and the persian gulf. In: The biology of the indian ocean. Springer. Berlin, Heidelberg. pp: 415-430.
55
Newman, S.P.; Handy, R.D. and Gruber, S.H., 2007. Spatial and temporal variations in mangrove and seagrass faunal communities at bimini, bahamas. Bulletin of Marine Science. Vol. 80, No. 3, pp: 529-553.
56
Ogamba, E. and Abowei, J., 2014. Finfish species distribution and seasonality in odi river, niger delta, nigeria. Journal of Aquatic Sciences. Vol. 29, No. 1, pp: 13-22.
57
Oribhabor, B. and Ogbeibu, A., 2012. The food and feeding habits of fish species assemblage in a niger delta mangrove creek, nigeria. Journal of Fisheries and Aquatic Science. Vol. 7, No. 2, pp: 130-134.
58
Paighambari, S.Y.; Pouladi, M.; Parsa, M.; Mehdipour, N.; Haghighatjou, N.; Jabaleh, A. and Hedayati, A., 2017. Seasonal relative abundance of fish larvae in Helleh River estuary (north of the Persian Gulf, Iran). Biodiversitas Journal of Biological Diversity. Vol. 18, No. 2, pp: 541-547.
59
Parvaresh, H., 2011. Identification of threats on mangrove forests in Gabrik international wetland for sustainable management. In: 2011 International Conference, Environment and Chemistry IPCBEE.
60
Patzner, R.; Van Tassell, J.L.; Kovacic. M. and Kapoor, B., 2011. The biology of Gobies. CRC Press.702 p.
61
Quinn, N.J., 1980. Analysis of temporal changes in fish assemblages in serpentine creek, queensland. Environmental Biology of Fishes. Vol. 5, No. 2, pp: 117-133.
62
Rabbaniha, M.; Ghasemzadeh, J. and Owfi, F., 2013. Spatial and temporal patterns of fish larvae assemblage in the northern coastal waters of Persian Gulf along the Bushehr province shoreline. Journal of FisheriesSciences. Com. Vol. 7, No. 2, pp: 141-148.
63
Rainboth, W., 1994. Inland fishes of india and adjacent countries. Reviews in Fish Biology and Fisheries. Vol. 4, No. 1, pp: 135-136.
64
Rainboth, W., 1996. Fishes of the cambodian mekong. Fao species identification field guide for fishery purposes. Rome: FAO. 265 p.
65
Raeisi, H.; Daliri, M.; Hosseini, A.; Kamrani, E.; Moradinasab, G.; Aghajanpour, M.; Moein, M. and Naderi, M., 2014. Length–weight relationships of four fish species caught in the northern persian gulf (horomzgan waters, iran). Journal of Applied Ichthyology. Vol. 30, No. 5, pp: 1071-1072.
66
Randall, J., 1995. The complete divers’& fishermen’s guide to coastal fishes of oman. University of Hawaii Press .Bathurst Crawford House Publishing. 422 p.
67
Robertson, A.I. and Duke, N.C., 1990. Recruitment, growth and residence time of fishes in a tropical australian mangrove system. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 31, No. 5, pp: 723-743.
68
Shahraki, M.; Saint-Paul, U.; Krumme, U. and Fry, B., 2016. Fish use of intertidal mangrove creeks at Qeshm Island, Iran. Marine Ecology Progress Series. Vol. 542, pp: 153-166.
69
Shannon, C.E. and Weaver, W., 1963. The mathematical theory of communication. 1949. Urbana, IL: University of Illinois Press.
70
Shapiro, D.Y.; Sadovy, Y. and McGehee, M.A., 1993. Size, composition, and spatial structure of the annual spawning aggregation of the red hind, Epinephelus guttatus (pisces: Serranidae). Copeia. pp: 399-406.
71
Shenker, J.M. and Dean, J.M., 1979. The utilization of an intertidal salt marsh creek by larval and juvenile fishes: Abundance, diversity and temporal variation. Estuaries and Coasts. Vol. 2, No. 3, pp: 154-163.
72
Shervette, V.; Aguirre, W.; Blacio, E.; Cevallos, R.; Gonzalez, M.; Pozo, F. and Gelwick, F., 2007. Fish communities of a disturbed mangrove wetlو و an adjacent tidal river in palmar, ecuador. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 72, No. 1, pp: 115-128.
73
Simard, M.; Rivera-Monroy, V.H.; Mancera-Pineda, J.E.; Castañeda-Moya, E. and Twilley, R.R., 2008. A systematic method for 3d mapping of mangrove forests based on shuttle radar topography mission elevation data, icesat/glas waveforms and field data: Application to ciénaga grande de santa marta, colombia. Remote Sensing of Environment. Vol. 112, No. 5, pp: 2131-2144.
74
Sommer, C., 1996. The living marine resources of somalia. Food & Agriculture Org. 374 p.
75
Smith, M.M. and Heemstra, P.C., 2012. Smiths’ sea fishes. Springer Science & Business Media. 1039 p.
76
Spach, H.; Santos, C.; Godefroid, R.; Nardi, M. and Cunha, F., 2004. A study of the fish community structure in a tidal creek. Brazilian Journal of Biology. Vol. 64, No. 2, pp: 337-351.
77
Taghizade, A.; Danehkar, A.; Kamrani, E. and Mahmoudi, B., 2009. Investigation on the structure and dispersion of mangrove forest community in sirik site in hormozgan province. Iranian Journal of forest. Vol. 1, No. 1, pp: 25-34.
78
Taherizadeh, M. and Sharifinia, M., 2015. Applicability of ecological benthic health evaluation tools to three subtropical estuaries (azini, jask and khalasi) from the iranian coastal waters. Environmental Earth Sciences. Vol. 74, No. 4, pp: 3485-3499.
79
Tam, N.F. and Wong, Y.S., 1997. Accumulation and distribution of heavy metals in a simulated mangrove system treated with sewage. Hydrobiologia. Vol. 352, No. 1, pp: 67-75.
80
Tsai, C.H.; Wang, Y.K.; Tsai, S.T. and Wu, S.H., 2015. Seasonal and diel changes of the fish assemblage employing the fyke nets in a subtropical mangrove estuary of puzih river, taiwan. Journal of Marine Science and Technology. Vol. 23, No. 1, pp: 109-116.
81
Valinassab, T.; Daryanabard, R.; Dehghani, R. and Pierce, G., 2006. Abundance of demersal fish resources in the persian gulf and oman sea. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. Vol. 86, No. 06, pp: 1455-1462.
82
Vaughan, D.B.; Grutter, A.S; Costello, M.J. and Hutson, K.S., 2017. Cleaner fishes and shrimp diversity and a re‐evaluation of cleaning symbioses. Fish and Fisheries. Vol. 18, No. 4, pp: 698-716.
83
Wakwabi, E.O. and Mees, J., 1999. The epibenthos of the backwaters of a tropical mangrove creek (tudor creek, mombasa, kenya). Netherlands journal of zoology. Vol. 49, No. 3, pp: 189-206.
84
Walters, B.B.; Rönnbäck, P.; Kovacs, J.M.; Crona, B.; Hussain, S.A.; Badola, R.; Primavera, J.H.; Barbier, E. and Dahdouh-Guebas, F., 2008. Ethnobiology, socio economics and management of mangrove forests: A review. Aquatic Botany. Vol. 89, No. 2, pp: 220-236.
85
Wang, Y.T.; Tzeng, W.N. and Lee, S.C., 1991. A preliminary study on species composition and seasonal abundance of fish eggs and larvae from the coastal waters adjacent to the tansui river estuary, taiwan. Journal of the Fisheries Society of Taiwan. Vol. 18, No. 1, pp: 7-20.
86
Warburton, K., 1978. Community structure, abundance and diversity of fish in a mexican coastal lagoon system. Estuarine and coastal marine science. Vol. 7, No. 6, pp: 497-519.
87
Whitfield, A. and Blaber, S., 1978. Food and feeding ecology of piscivorous fishes at lake st lucia, zululand. Journal of Fish Biology. Vol. 13, No. 6, pp: 675-691.
88
ORIGINAL_ARTICLE
اثر استرس نگه داری در شرایط اسارت بر تغییرات شاخصهای فیزیولوژیک موثر در تولیدمثل ماهی ماده سفید دریای خزر (Rutilus frisii kutum)
ماهیان استخوانی دریای خزر از جمله مهم ترین و با ارزش ترین ماهیان این دریا می باشند، که متأسفانه ذخایر آن در سال های اخیر به دلایل متعدد رو به کاهش نهاده است. تحقیق حاضر، به منظور بررسی اثر استرس نگه داری بر تغییرات شاخص های فیزیولوژیک موثر در تولیدمثل ماهیان مولد سفید دریای خزر انجام شد. ماهیان برای تطابق با شرایط جدید به مدت 3 روز دوره سازگاری را طی کردند و سپس به طور تصادفی و به تعداد مساوی (10 عدد در هر مخزن) در 3 مخزن فایبرگلاس (گروه شاهد، تیمار اول، تیمار دوم) توزیع و به مدت 10 روز در شرایط اسارت نگه داری شدند. بعد از 10 روز نگه داری، به ماهیان تیماراول و دوم هورمون محرک رسیدگی جنسی (Ovaprim) تزریق شد. از نمونه ها طی 3 مرحله، نمونه خون گرفته شد. نتایج نشان داد، میزان هورمون 17بتااسترادیول پلاسما، بعد از 10 روز نگه داری و بعد از رسیدگی جنسی در تمام گروه های آزمایشی نسبت به قبل از شروع آزمایش کاهش یافت که این کاهش بعد از رسیدگی جنسی، نسبت به قبل از شروع آزمایش معنی دار بود (0/05>P). میزان تستوسترون پلاسما، درهمه گروههای آزمایشی کاهش معنی داری داشت (0/05>P). تغییرات سطح هورمون پروژسترون در تمامی گروههای آزمایشی معنی دار نبود (0/05<P). براساس نتایج این تحقیق، می توان بیان نمود که استرس نگه داری در شرایط اسارت در مولدین ماده بر روی شاخصهای فیزیولوژیک مورد بررسی، تاثیرگذار بوده است. کاهش نسبی مقادیر پارامترهای بررسی شده موجود در پلاسمای خون این ماهیان، نظیر هورمونهای جنسی پلاسما (17 بتا استرادیول، تستوسترون و پروژسترون) که در برخی موارد قابل ملاحظه و معنی دار بود، نشان دهنده این اثرات است.
http://www.aejournal.ir/article_98974_e17a140a9cda4d18c9b69a6c7be3dc57.pdf
2019-09-23
127
134
شرایط اسارت
هورمونهای جنسی پلاسما
کورتیزول
تولیدمثل
Rutilus frisii kutum
علی نقی
سرپناه
sarpanah5050@gmail.com
1
مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
امینیان فتیده، ب.؛ کریمزاده، ق.؛ جعفری، ع. و وحدتیراد، ن.، 1395. بررسی بیولوژی و تأثیر شرایط محیطی بر میزان صید و مهاجرت ماهی سفید در حوضه جنوب شرقی دریای خزر (استان گلستان). مجله پژوهشهای جانوری (مجله زیست شناسی ایران). جلد 29، شماره 4، صفحات 380 تا 400.
1
خانی پور، ع.ا. و ولی پور، ع.، 1388. ماهی سفید جواهر دریای خزر. موسسه تحقیقات شیلات ایران. مدیریت اطلاعات علمی. 77 صفحه.
2
عسکریان، ف. و کوشا، آ.، 1385. مجموعه فیزیولوژی ماهی و آبزیان. نشر علوم کشاورزی. 432 صفحه.
3
Campbell, P.M.; Pottinger, T.G. and Sumpter, J.P., 1994. Preliminary evidence that chronic confinement stress reduces the quality of gametes produced by brown and rainbow trout. Aquaculture. Vol. 120, No. 1-2, pp: 151-169.
4
de Jesus, E.G.; Hirano, T. and Inui, Y., 1991. Changes in cortisol and thyroid hormone concentrations during early development and metamorphosis in the Japanese flounder, Paralichthys olivaceus. Gen. Comp. Endocrinol. Vol. 82, No. 3, pp: 369-376.
5
Falahatkar, B.; Poursaeid, S.; Langroudi, H.E.; Efatpanah, I.; Meknatkhah, B. and Rahmati, M., 2013. Spawning induction in Kutum, Rutilus frisii kutum (Kamensky), with different hormones: Analysis of hormone profiles and induced spawning success. Arch. Pol. Fish. Vol. 21, No. 4, pp: 271-281.
6
Falahatkar, B.; Poursaeid, S.; Shakoorian, M. and Barton, B., 2009. Responses to handling and confinement stressors in juvenile great sturgeon Huso huso. J. Fish Biol. Vol. 75, No. 4, pp: 784-796.
7
Fischbach, F.T. and Dunning, M.B., 2009. Manual of Laboratory and Diagnostic Tests, 8th end. Philadelphia: Lippincott Williams and Wilkins. 1317 p.
8
Hwang, P.P.; Wu, S.M.; Lin, J.H. and Wu, L.S., 1992. Cortisol content of eggs and larvae of teleosts. Gen. Comp. Endocrinol. Vol. 86, No. 2, pp: 189-196.
9
Haddy, J.A. and Pankhurst, N.W., 2000. The efficacy of exogenous hormones in stimulating changes in plasma steroids and ovulation in wild black bream Acanthopagrus butcheri is improved by treatment at capture. Aquaculture. Vol. 191, No. 4, pp: 351-366.
10
Hiroi, J.; Sakakura, Y.; Tagawa, M.; Seikai, T. and Tanaka, M., 1997. Developmental changes in low-salinity tolerance and responses of prolactin, cortisol and thyroid hormones to low-salinity environment in larvae and juveniles of Japanese flounder, Paralichthys olivaceus. Zool. Sci. Vol. 14, No. 6, pp: 987-992.
11
Hwang, P.P. and Wu, S.M., 1993. Role of cortisol in hypoosmoregulation in larvae of the tilapia (Oreochromis mossambicus). Gen. Comp. Endocrinol. Vol. 92, No. 2, pp: 318-324.
12
Janz, D.M. and Van Der Kraak, G., 1997. Suppression of apoptosis by gonadotropin, 17β estradiol, and epidermal growth factor in rainbow trout preovulatory ovarian follicles. Gen. Comp. Endocrinol. Vol. 105, No. 2, pp: 186-193.
13
Jentoft, S.; Aastveit, A.H.; Torjesen, P.A. and Andersen, Ø., 2005. Effects of stress on growth, cortisol and glucose levels in non-domesticated Eurasian perch (Perca fluviatilis) and domesticated rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Comp. Biochem. Physiol., Part A: Mol. Integr. Physiol. Vol. 141, No. 3, pp: 353-358.
14
Kubokawa, K.; Watanabe, T., Yoshioka, M. and Iwata, M., 1999. Effects of acute stress on plasma cortisol, sex steroid hormone and glucose levels in male and female sockeye salmon during the breeding season. Aquaculture. Vol. 172, No. 3-4, pp: 335-349.
15
Nikoo, M. and Falahatkar, B., 2012. Physiological responses in wild broodstocks of the Caspian Kutum (Rutilus frisii kutum) subjected to transportation stress. J. Appl. Anim. Welfare Sci. Vol. 15, No. 4, pp: 372-382.
16
Pankhurst, N.W. and Van Der Kraak, G., 2000. Evidence that acute stress inhibits ovarian steroidogenesis in rainbow trout in vivo, through the action of cortisol. Gen. Comp. Endocrinol. Vol. 117, No. 2, pp: 225-237.
17
Pankhurst, N.W. and Van Der Kraak, G., 1997. Effects of stress on reproduction and growth on fish. Fish Stress and Health in Aquaculture, GK Iwama, AD Pickering, JP Sumpter, CB Schreck (ed), Cambridge. pp: 73-93.
18
Podhorec, P. and Kouril, J., 2009. Induction of final oocyte maturation in Cyprinidae fish by hypothalamic factors: a review. Vet. Med. Vol. 54, No. 3, pp: 97-110.
19
Pottinger, T.G. and Carrick, T.R., 1999. Modification of the plasma cortisol response to stress in rainbow trout by selective breeding. Gen. Comp. Endocrinol. Vol. 116, No. 1, pp: 122-132.
20
Ramsay, J.M.; Feist, G.W.; Varga, Z.M.; Westerfield, M.; Kent, M.L. and Schreck, C.B., 2006. Whole-body cortisol is an indicator of crowding stress in adult zebrafish, Danio rerio. Aquaculture. Vol. 258, No. 1-4, pp: 565-574.
21
Schaefer, K.M., 2001. Reproductive biology of tunas. In Tuna physiology, ecology, and evolution. Vol. 19. Fish Physiology. (Eds BA Block and ED Stevens). pp: 225-270.
22
Shafiei Sabet, S.; Imanpoor, M.R.; Aminian Fatideh, B. and Gorgin, S., 2009. Study on sexual maturity and levels of gonad steroid hormones in female kutum Rutilus frisii kutum (Kamenskii, 1901) during spawning season from river Sefid-Rood of the Southern Caspian Sea. J. Cell Anim. Biol. Vol. 3, No. 11, pp: 208-215.
23
Simontacchi, C.; Poltronieri, C.; Carraro, C.; Bertotto, D.; Xiccato, G.; Trocino, A. and Radaelli, G., 2008. Alternative stress indicators in sea bass Dicentrarchus labrax, L. J. Fish Biol. Vol. 72, No. 3, pp: 747-752.
24
Small, B.C., 2004. Effect of dietary cortisol administration on growth and reproductive success of channel catfish. J. Fish Biol. Vol. 64, No. 3, pp: 589-596.
25
Snyder, D.E., 1984. Fish eggs and larvae. In Fisheries techniques. Nielsen, L.A. Johnson, D.L. (Eds). American Fisheries Society, Bethesda. pp: 165-198.
26
Soso, A.B.; Gil Barcellos, L.J.; Ranzani‐Paiva, M.J.; Kreutz, L.C.; Quevedo, R.M.; Lima, M.; Bolognesida Silva, L.; Ritter, F.; Bedin, A.C. and Finco, J.A., 2008. The effects of stressful broodstock handling on hormonal profiles and reproductive performance of Rhamdia quelen (Quoy & Gaimard) females. J. World Aquacult. Soc. Vol. 39, No. 6, pp: 835-841.
27
Stouthart, A.J.; Lucassen, E.C.; Van Strien, F.J.; Balm, P.H.; Lock, R.A. and Bonga, S.W., 1998. Stress responsiveness of the pituitary-interrenal axis during early life stages of common carp (Cyprinus carpio). Journal of endocrinology. Vol. 157, No. 1, pp: 127-137.
28
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر سطوح مختلف سین بیوتیک بایومین ایمبو بر شاخصهای رشد، تغذیه و بازماندگی بچه ماهی سیکلید ترور سبز Andinoacara rivulatus
این پژوهش به منظور ارزیابی تأثیر سطوح متفاوت سین بیوتیک بایومین ایمبو بر شاخص های رشد، تغذیه و بازماندگی در بچه ماهیان سیکلید گرین ترور Andinoacara rivulatus به مدت 60 روز انجام گرفت. آزمایش با استفاده از طرح کاملاٌ تصادفی شامل سطوح صفر (شاهد)، 0/5، 1 و 1/5 گرم سین بیوتیک به ازای هر کیلوگرم جیره در قالب چهار تیمار با سه تکرار طراحی شد. آزمایش درون آکواریوم های 200 لیتری که با 170 لیتر آب پر شده بود انجام گرفت. تعداد 10 عدد بچه ماهی هم وزن در هر مخزن ذخیره سازی و تا حد سیری تغذیه شدند. بر اساس نتایج میزان افزایش وزن بدن، درصد افزایش وزن بدن، نرخ رشد ویژه و نسبت کارائی پروتئین تغذیه شده با سطح 1/5 گرم در کیلوگرم سین بیوتیک از پیشرفت معنی داری نسبت به سایر تیمارها برخوردار بود (0/05>P). هم چنین میزان فاکتور وضعیت افزایش معنی داری را در تیمار 0/5 گرم در کیلوگرم سین بیوتیک از خود نشان داد (0/05>P). از نظر بازماندگی، هیچ تلفاتی در بین تیمارها مشاهده نگردید. با توجه به نتایج مطالعه حاضر می توان چنین استنباط نمود که افزودن سین بیوتیک به جیره غذایی به خصوص در سطح 1/5 گرم در کیلوگرم می تواند در برخی از فاکتورهای رشد و تغذیه بچه ماهیان سیکلید گرین ترور موثر واقع شود و به عنوان یک مکمل مناسب برای جیره غذایی این گونه مد نظر قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_98976_a1f1a8f112d9a90cbcaf1827e22bfcfc.pdf
2019-09-23
135
140
سین بیوتیک بایومین ایمبو
رشد
بازماندگی
سیکلید ترور سبز Andinoacara rivulatus
رضا
چنگیزی
rech76ir@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده دامپزشکی، واحد بابل، دانشگاه آزاد اسلامی، بابل، ایران
LEAD_AUTHOR
حامد
منوچهری
manouchehri@baboliau.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده دامپزشکی، واحد بابل، دانشگاه آزاد اسلامی، بابل، ایران
AUTHOR
سید مهدی
حسینی فرد
sm_hosseinifard@yahoo.com
3
گروه دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد بابل، ایران
AUTHOR
زهرا
غیاثوند
zaghiasvand@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد آزادشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، آزادشهر، ایران
AUTHOR
Ai, Q.; Mai, K.; Tan, B.; Xu, W.; Duan, Q.; Ma, H. and Zhang, L., 2006. Replacement of fish meal by meat and bone meal in diets for large yellow croaker, Pseudosciaena crocea. Aquaculture. Vol. 260, pp: 255-263.
1
Azimirad, M.; Meshkini, S.; Ahmadifard, N. and Hoseinifar, S.H., 2016. The effects of feeding with synbiotic (Pediococcus acidilactici and fructooligosaccharide) enriched adult Artemia on skin mucus immune responses, stress resistance, intestinal microbiota and performance of angelfish (Pterophyllum scalare). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 54, pp: 516-522.
2
Biondo, M.V., 2017. Quantifying the trade in marine ornamental fishes into Switzerland and an estimation of imports from the European Union. Global Ecology and Conservation. Vol. 11, pp: 95-105.
3
Brunt, K. and Sanders, P., 2013. Improvement of the AOAC 2009.01 total dietary fibre method for bread and other high starch containing matrices. Food Chemistry. Vol. 140, pp: 574-580.
4
Cerezuela, R.; Guardiola, F.A.; Meseguer, J. and Esteban, M.Á., 2012. Increases in immune parameters by inulin and Bacillus subtilis dietary administration to gilthead seabream (Sparus aurata L.) did not correlate with disease resistance to Photobacterium damselae. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 32, pp: 1032-1040.
5
Cervino, J.M.; Hayes, R.L.; Honovich, M.; Goreau, T.J.; Jones, S. and Rubec, P.J., 2003. Changes in zooxanthellae density, morphology, and mitotic index in hermatypic corals and anemones exposed to cyanide. Marine Pollution Bulletin, Vol. 46, pp: 573-586.
6
Chen, H.; Liu, S.; Xu, X.R.; Diao, Z.H.; Sun, K.F.; Hao, Q.W.; Liu, S.S. and Ying, G.G., 2018. Tissue distribution, bioaccumulation characteristics and health risk of antibiotics in cultured fish from a typical aquaculture area. Journal of Hazardous Materials. Vol. 343, pp: 140-148.
7
Geraylou, Z.; Souffreau, C.; Rurangwa, E.; D'Hondt, S.; Callewaert, L.; Courtin, C.M.; Delcour, J.A.; Buyse, J. and Ollevier, F., 2012. Effects of arabinoxylan oligosaccharides (AXOS) on juvenile Siberian sturgeon (Acipenser baerii) performance, immune responses and gastrointestinal microbial community. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 33, pp: 718-724.
8
Hamid, S.N.I.N.; Abdullah, M.F.; Zakaria, Z.; Yusof, S.J.H.M. and Abdullah, R., 2016. Formulation of Fish Feed with Optimum Protein-bound Lysine for African Catfish (Clarias Gariepinus) Fingerlings. Procedia Engineering. Vol. 148, pp: 361-369.
9
Hoseinifar, S.H.; Dadar, M. and Ringø, E., 2017. Modulation of nutrient digestibility and digestive enzyme activities in aquatic animals: The functional feed additives scenario. Aquaculture Research. Vol. 48, pp: 3987-4000.
10
Hoseinifar, S.H.; Mirvaghefi, A.; Mojazi Amiri, B., Rostami, H.K. and Merrifield, D.L., 2011. The effects of oligofructose on growth performance, survival and autochthonous intestinal microbiota of beluga (Huso huso) juveniles. Aquaculture Nutrition. Vol. 17, pp: 498-504.
11
Hoseinifar, S.H.; Ringø, E.; Shenavar Masouleh, A. and Esteban, M.Á., 2016. Probiotic, prebiotic and synbiotic supplements in sturgeon aquaculture: a review. Reviews in Aquaculture. Vol. 8, pp: 89-102.
12
Hu, L.; Yun, B.; Xue, M.; Wang, J.; Wu, X.; Zheng, Y. and Han, F., 2013. Effects of fish meal quality and fish meal substitution by animal protein blend on growth performance, flesh quality and liver histology of Japanese seabass (Lateolabrax japonicus). Aquaculture. pp: 372-375, 52-61.
13
Huynh, T.G.; Cheng, A.C.; Chi, C.C.; Chiu, K.H. and Liu, C.H., 2018. A synbiotic improves the immunity of white shrimp, Litopenaeus vannamei: Metabolomic analysis reveal compelling evidence. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 79, pp: 284-293.
14
Huynh, T.G.; Shiu, Y.L.; Nguyen, T.P.; Truong, Q.P.; Chen, J.C. and Liu, C.H., 2017. Current applications, selection, and possible mechanisms of actions of synbiotics in improving the growth and health status in aquaculture: A review. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 64, pp: 367-382.
15
Kumar, P.; Jain, K.K. and Sardar, P., 2018. Effects of dietary synbiotic on innate immunity, antioxidant activity and disease resistance of Cirrhinus mrigala juveniles. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 80, pp: 124-132.
16
Liu, S.; Bekele, T.G.; Zhao, H.; Cai, X. and Chen, J., 2018. Bioaccumulation and tissue distribution of antibiotics in wild marine fish from Laizhou Bay, North China. Science of The Total Environment. pp: 631-632, 1398-1405.
17
Luo, L.; Li, T.; Xing, W.; Xue, M.; Ma, Z.; Jiang, N. and Li, W., 2015. Effects of feeding rates and feeding frequency on the growth performances of juvenile hybrid sturgeon, Acipenser schrenckii Brandt♀×A. baeri Brandt♂. Aquaculture. Vol. 448, pp: 229-233.
18
Mahghani, F.; Gharaei, A.; Ghaffari, M. and Akrami, R., 2016. Dietary synbiotic improves the growth performance, survival and innate immune response of Gibel carp (Carassius auratus gibelio) juveniles. International Journal of Aquatic Biology. Vol. 2, pp: 99-104.
19
Mehrabi, Z.; Firouzbakhsh, F. and Jafarpour, A., 2012. Effects of dietary supplementation of synbiotic on growth performance, serum biochemical parameters and carcass composition in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fingerlings. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition. Vol. 96, pp: 474-481.
20
Montajami, S.; Hajiahmadyan, M.; Forouhar Vajargah, M.; Sadat, A.; Zarandeh, H.; Shirood Mirzaie, F. and Abbas Hosseini, S., 2012. Effect of Synbiotic (Biomin imbo) on Growth Performance and Survival Rate of Texas Cichlid (Herichthys cyanoguttatus) Larvae.
21
Mouriño, J.L.P.; Pereira, G.D.V.; Vieira, F.D.N.; Jatobá, A.B.; Ushizima, T.T.; Silva, B.C.D.; Seiffert, W.Q.; Jesus, G.F.A. and Martins, M.L., 2016. Isolation of probiotic bacteria from the hybrid South American catfish Pseudoplatystomareticulatum×Pseudoplatystoma corruscans (Siluriformes: Pimelodidae): A haematological approach. Aquaculture Reports. Vol. 3, pp: 166-171.
22
Nosratpur, A.; Kamali, A. and Akrami, R., 2013. Effects of Immunogen Supplementation on Growth Index, Survival and Body Composition of the Pacific white Shrimp (Litopenaeus Vannamei) Journal of Renewable Natural Resources Research. Vol. 2, pp: 1-8.
23
Rodriguez, U.; Satoh, S.; Haga, Y.; Fushimi, H. and Sweetman, J., 2013. Effects of Inactivated Enterococcus faecalis and Mannan Oligosaccharide and Their Combination on Growth, Immunity, and Disease Protection in Rainbow Trout.
24
Santos, M.A.; Jerônimo, G.T.; Cardoso, L.; Tancredo, K.R.; Medeiros, P.B.; Ferrarezi, J.V.; Gonçalves, E.L.T.; da Costa Assis, G. and Martins, M.L., 2017. Parasitic fauna and histopathology of farmed freshwater ornamental fish in Brazil. Aquaculture. Vol. 470, pp: 103-109.
25
Souza, S.O.; Pereira, T.R.S.; Ávila, D.V.L.; Paixão, L.B.; Soares, S.A.R.; Queiroz, A.F.S.; Pessoa, A.G.G.; Korn, M.D.G.A.; Maranhão, T.A. and Araujo, R.G.O., 2018. Optimization of sample preparation procedures for evaluation of the mineral composition of fish feeds using ICP-based methods. Food Chemistry.
26
Talebi Haghighi, D.; Fallahi, M. and Abdollahtabar, Y., 2012. The effect of different levels of Biomin Imbo synbiotic on growth and, survival of Rutilus frisii kutum fry. Journal of Fisheries of Islamic Azad University, Azadshahr Branch. Vol. 4, pp: 1-15.
27
Wang, X.; Sun, Y.; Wang, L.; Li, X.; Qu, K. and Xu, Y., 2017. Synbiotic dietary supplement affects growth, immune responses and intestinal microbiota of Apostichopus japonicus. Fish & Shellfish Immunol. Vol. 68, pp: 232-242.
28
Whittington, R.J. and Chong, R., 2007. Global trade in ornamental fish from an Australian perspective: The case for revised import risk analysis and management strategies. Preventive Veterinary Medicine. Vol. 81, pp: 92-116.
29
Xue, M.; Luo, L.; Wu, X.; Ren, Z.; Gao, P.; Yu, Y. and Pearl, G., 2006. Effects of six alternative lipid sources on growth and tissue fatty acid composition in Japanese sea bass (Lateolabrax japonicus). Aquaculture. Vol. 260, pp: 206-214.
30
YE, J.D.; Wang, K.; LI, F.D. and Sun, Y.Z., 2014. Single or combined effects of fructo- and mannan oligosaccharide supplements and Bacillus clausii on the growth, feed utilization, body composition, digestive enzyme activity, innate immune response and lipid metabolism of the Japanese flounder Paralichthys olivaceus. Aquaculture Nutrition. Vol. 17, pp: e902-e911.
31
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر سطوح مختلف گیاهان دارویی در جیره بر برخی شاخص های خونی، بیوشیمیایی و ایمنی قزل آلای رنگین کمان پرورشی (Oncorhynchus mykiss) در مرحله پرواری
مطالعه تاثیر استفاده از گیاهان دارویی در جیره بر روی شاخص های خونی، بیوشیمیایی و ایمنی قزل آلای رنگین کمان پرورشی در مرحله پرواری در پژوهشکده اکولوژی دریای خزر در سال های 97-96 انجام شد. تعداد 180 عدد قزل آلای رنگین کمان پرورشی با میانگین وزنی 2/1±28/7 گرم در 9 عدد مخزن فایبرگلاس (به حجم 150 لیتر و با حجم آبگیری 100 لیتر) تقسیم گردیده و به مدت 7 هفته با سه جیره غذای حاوی صفر (شاهد)، 2 و 4 درصد مخلوط گیاهان دارویی (مخلوطی مساوی از شش گیاه دارویی ازجمله شیرین بیان، یونجه، گل همیشه بهار، سنجد، آویشن و سیر) تغذیه شدند. میانگین بازماندگی در پایان آزمایش 100 درصد بوده است. در انتهای دوره از ماهیان خونگیری شد و شاخص های خونی، بیوشیمیایی و ایمنی تیمارها مورد مقایسه آماری قرار گرفتند. نتایج به دست آمده نشان داد که در تعداد گلبول های قرمز، هماتوکریت و IGM ماهیان تغذیه شده با مخلوط گیاهان دارویی در غلظت 4% تفاوت معنی داری با شاهد وجود دارد. نتایج حاصله مبین آن است که مخلوط گیاهان دارویی، دارای اثرات تقویت کننده سیستم ایمنی غیراختصاصی در ماهی قزل آلای رنگین کمان می باشد. بنابراین استفاده از این مخلوط گیاهان دارویی در سطح 4% به عنوان محرک ایمنی در جیره ماهی قزل آلای رنگین کمان، توصیه می شود (0/01>p).
http://www.aejournal.ir/article_99006_15b1af634c2430753e5c2db7fd0d8329.pdf
2019-09-23
141
146
قزل آلای رنگین کمان
گیاه دارویی
شاخص خونی
بیوشیمیایی و ایمنی
حمید
رمضانی
hamid_ramzani@yahoo.com
1
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد
بینایی
babakbinaii@gmail.com
2
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران
AUTHOR
حسن
فضلی
hn_fazli@yahoo.com
3
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران
AUTHOR
پورغلام، ر.؛ شریف روحانی، م.؛ صفری، ر.؛ سعیدی، ع.ا.؛ بینایی، م.؛ نجفیان، ر.؛ بانکه ساز، ز.؛ تقوی، م.ج. و سپهداری، ا.، 1392. اثر عصاره سرخارگل بر برخی شاخص های ایمنی و بازماندگی قزل آلای رنگین کمان در برابر استرپتوکوکوس اینیایی. مجله علمی شیلات ایران. دوره 26، شماره 3، صفحات 1 تا 12.
1
زرگری، ع.، 1368. گیاهان دارویی. جلد اول. موسسه انتشارات و چاپ دانشگاه تهران. 947 صفحه.
2
زرگری، ع.، 1368. گیاهان دارویی. جلد دوم. موسسه انتشارات و چاپ دانشگاه تهران. 850 صفحه.
3
سلطانی، م.؛ ظریف منش، ط. و ذریه الزهرا، س.ج.، 1391. مطالعه تاثیر اسانس آویشن شیرازی (Zataria multiflora) بر میزان فعالیت سیستم عامل مکمل و لیزوزیم خون ماهی قزل آلای رنگین کمان (Onchorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران. دوره 21، شماره 4، صفحات 13 تا 22.
4
عمادی، ح.، 1367. تکثیر و پرورش ماهی قزل آلا و ماهی آزاد. تهران. 212 صفحه.
5
قاسمی پیربلوطی، ع.؛ پیرعلی، ا.؛ پیشکار، غ.؛ جلالی، م.؛ ریسی، م.؛ جعفریان دهکردی، م. و بهزاد، ح.، 1390. اثر اسانس چند گیاه دارویی بر سیستم ایمنی قزل آلای رنگین کمان پرورشی (Onchorhynchus mykiss). نشریه گیاهان دارویی. شماره 2، دوره 2، صفحات 149 تا 155.
6
Awad, E. and Austin, B., 2010. Use of lupin, Lupinus perennis, mango, Mangifera indica, and stinging nettle, Urtica dioica, as feed additives to prevent Aeromonas hydrophila infection in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Journal of Fish Diseases. Vol. 33, pp: 413-420.
7
Binaii, M.; Ghiasi, M.; Farabi, S.M.V.; Pourgholam, R.; Fazli, H. and Safari, R., 2014. Biochemical and hemato immunological parameters in juvenile beluga (Husohuso) following the diet supplemented with nettle (Urticadioica). Fish Shellfish Immunol. Vol. 36, pp: 46-51.
8
Blaxhall, P.C. and Daisley, W., 1973. Routine haematological methods for use with fish blood. J Fish Biol. Vol. 5, pp: 771-781.
9
Borges, A.; Scotti, L.V.; Siqueira, D.R.; Jurinitz, D.F. and Wassermann, G.F., 2004. Hematologic and serum biochemical values for jundia´ (Rhamdiaquelen). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 30, pp: 21-25.
10
Dorucu, M.; Ozesen Colak, S.; Ispir, U.; Altinterim, B. and Celayir, Y., 2009. The Effect of Black Cumin Seeds, Nigella sativa, on the Immune Response of Rainbow Trout, Oncorhynchus mykiss. Mediterranean Aquaculture Journal. Vol. 2, No. 2, pp: 1-7.
11
Gabor, E.F.; Şara, A. and Barbu, A., 2010. The effects of some Phyto-additives on growth, health and meat quality on different species of fish. Scientific Papers: Animal Sciences and Biotechnologies. Vol. 43, No. 1, pp: 61-65.
12
Ellis, A.E., 1990. Lysozyme assay, techniques in fish immunology .2nd end. Fair Haven, USA. pp: 100-102.
13
Fazlolahzadeh, F.; Keramati, K.; Nazifi, S.; Shirian, S. and Seifi, S., 2011. Effect of Garlic (Allium sativum) on Hematological Parameters and Plasma Activities of ALT and AST of Rainbow trout in Temperature Stress. Australian Journal of Basic and Applied Sciences. Vol. 5, No. 9, pp: 84-90.
14
Haghighi, M. and Sharif Rohani, M., 2013. The effects of powdered ginger (Zingiber officinale) on the haematological and immunological parameters of rainbow trout oncorhynchus mykiss. Journal of medicinal plant and herbal Therapy research. Vol. 1, pp: 8-12.
15
Ndong, D. and Fall, J., 2011. The effect of garlic (Allium sativum) on growth and immune responses of hybrid tilapia (Oreochromis niloticus x Oreochromis aureus). Journal of Clinical Immnunology and Immunopathology Research. Vol. 3, No. 1. pp: 1-9.
16
Sheikhzadeh, N.; Nofouzi, K.; Delazar, A. and Khani Oushani, A., 2011. Immunomodulatory effects of decaffeinated green tea (Camellia sinensis) on the immune system of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish and shellfish immunology. Vol. 31, pp: 1268-1269.
17
ORIGINAL_ARTICLE
اثر اسید مالیک جیره بر عملکرد رشد و هیستومورفولوژی بافت روده ماهی طلایی (Carassius auratus)
در تحقیق حاضر تاثیر اسید مالیک جیره بر رشد و هیستومورفولوژی بافت روده ماهی طلایی (Carassius auratus) مورد مطالعه قرار گرفت. برای این منظور 120 عدد ماهی طلایی با میانگین وزن 0/09±14/62 (میانگین ± خطای استاندارد) گرم در 4 تیمار و 3 تکرار تقسیم شدند. تیمارها شامل غلظت های مختلفی از اسید مالیک با مقادیر صفر (شاهد)، 2/5، 5 و 10 گرم به ازای هر کیلوگرم غذا بود. غذادهی ماهی ها روزانه 3 بار در حد سیری و به مدت 8 هفته صورت گرفت. زیست سنجی ماهی ها هر دو هفته یک بار انجام شد و در پایان دوره آزمایش از هر تکرار 3 ماهی جهت بررسی های هیستومورفولوژیکی بافت روده نمونه گیری شد. در نهایت از لحاظ وزن نهایی، درصد افزایش وزن بدن، نرخ رشد ویژه، ضریب تبدیل غذایی و شاخص وضعیت بین تیمارهای مختلف تفاوت معنی دار آماری مشاهده نشد (0/05<P). با بررسی بافت روده نیز تفاوت معنی دار آماری در طول پرزها، قطر بافت پوششی و هم چنین تعداد سلول های جامی شکل روده مشاهده نشد (0/05<P). نتایج پژوهش کنونی نشان داد که استفاده از اسید مالیک تاثیری بر عملکرد رشد و هیستومورفولوژی روده ماهی طلایی ندارد.
http://www.aejournal.ir/article_99108_16f9cabc6c3d322048f1338046f39923.pdf
2019-12-16
147
154
اسیدآلی
رشد
هیستومورفولوژی
کپور ماهیان
سمیرا
صدیقی
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
میر مسعود
سجادی
mmsajjadi@hotmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
LEAD_AUTHOR
سیدحسین
حسینی فر
hoseinifari@gau.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
اکرمی، ر.؛ حاجی مرادلو، ع.؛ عابدیان کناری، ع؛ و علی محمدی، ا.، 1387. اثرات سطوح متفاوت پروبیوتیک اینولین جیره غذایی بر شاخص های رشد، تغذیه، نرخ بازماندگی و ترکیب بدن فیل ماهیان (Huso huso) جوان پرورشی. مجله علمی پژوهشی دانشگاه کشاورزی و منایع طبیعی گرگان. شماره 5، صفحات 55 تا 65.
1
Baruah, K.; Sahu, N.P.; Pal, A.K.; Jain, K.K.;Debnath, D. and Mukherjee, S.C., 2007a.Dietary microbial phytase and citric acidsynergistically enhances nutrient digestibility andgrowth performance of Labeo rohita (Hamilton) juveniles at sub-optimal protein level. AquacultureResearch. Vol. 38, pp: 109-120.
2
Baruah, K.; Sahu, N.P.; Pal, A.K.; Debnath, D. and Yengkokpam, S., 2007b. Interactions of dietary microbial phytase, citric acid and crude protein level on mineral utilization by Rohu, Labeo rohita, juveniles. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 38, pp: 238-249.
3
Booth, I.R. and Stratford, M., 2003. Acidulants and low pH, in: Russel, N.J., Gould, G.W. (Eds.), Food Preservatives. Kluwer Academic/Plenum Publishers, New York. pp: 25-47.
4
Carbone, D. and Faggio, C., 2016. Importance of prebiotics in aquaculture as immunostimulants: Effects on immune system of Sparus aurata and Dicentrarchus labrax. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 54, pp: 172-178.
5
da Silva, B.C.; Vieira, F.D.N.; Mourino, J.L.P.; Bolivar, N. and Seiffert, W.Q., 2016. Butyrate and propionate improve the growth performance of Litopenaeus vannamei. Aquaculture Research.Vol. 47, pp: 612-623.
6
Dawood, M.A.O. and Koshio, S., 2016. Recent advances in the role of probiotics and prebiotics in carp aquaculture. Aquaculture. Vol. 454, pp: 243-251.
7
Defoirdt, T.Y.; Boon, N.Y.; Sorgeloos, P.Y.; Verstraete, W. and Bossier, P., 2009. Short-chain fatty acids and poly bhydroxyalkanoates: (New) Biocontrol agents for a sustainable animal production. Biotechnology Advances. Vol. 27, pp: 680-685.
8
Dehghani, N. and Jahanian, R., 2012. Effects of dietary organic acid supplementation on immune responses and some blood parameters of broilers fed diets with different protein levels. World’s Poultry Science Journal, Supplement 1, Expanded Abstract-Poster Presentation. Book of Abstracts. WPC2012 Salvador, Bahia, Brazil. pp: 5-9.
9
Diebold, G. and Eidelsburger, U., 2006. Acidification of diets as an alternative to antibiotic growth promoters. In: Antimicrobial Growth Promoters: Where do we go from here. Barug, D.; de Jong, L.; Kies, A.K. and Verstegen, M.W.S., (Eds.). Wageningen Academic Publishers, Wageningen, The Netherlands. pp: 311-327.
10
Gao, Y.L.; Storebakken, T.; Shearer, K.D.; Penn, M. and Overland, M., 2011. Supplementation of fishmeal and plant protein-based diets for rainbow trout with a mixture of sodium formate and butyrate. Aquaculture. Vol. 311, pp: 233-240.
11
Gislason, G.; Olsen, R. and Hinge, E., 1996. Comparative effects of dietary Na+‐lactate on Arctic char, Salvelinus alpinus L., and Atlantic salmon, Salmo salar L. Aquaculture Research. Vol. 27, pp: 429-435.
12
Hampson, D.J., 1986. Alteration in piglet small intestinal structure at weaning. Research in Veterinary Science. Vol. 40, pp: 39-40.
13
Hassaan, M.S.; Soltan, M.A.; Jarmołowicz, S.J. and Abdo, H.S., 2017. Combined effects of dietary malic acid and Bacillus subtilis on growth, gut microbiota and blood parameters of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture Nutrition.Vol. 00, pp: 1- 11.
14
Hossain, M.A.; Pandey, A. and Satoh, S., 2007. Effects of organic acids on growth and phosphorus utilization in red sea bream Pagrusmajor. Fisheries Science. Vol. 73, pp: 1309-1317.
15
Jones, D.L., 1998. Organic acids in the rhizospherea critical review. Plant and Soil. Vol. 205, pp: 25-44.
16
Khajepour, F. and Hosseini, S.A., 2012. Citric acid improves growth performance and phosphorus digestibility in Beluga, (Huso huso) fed diets where soybean meal partly replaced fish meal. Animal Feed Science and Technology. Vol. 171, pp: 68-73.
17
Lim, C.; Lückstädt, C.; Webster, C. and Kesius, P., 2015. Organic Acids and Their Salts. In: Dietary Nutrients, Additives, and Fish Health. Edited by Lee, C.S.; Lim, C.; Delbert, M. and Gatlin, D., Willy Blackwell. USA. pp: 305-319.
18
Liu, W.; Yang, Y.; Zhang, J.; Gatlin, M.D.; Ringo, E. and Zhou, Z., 2014. Effects of dietary microencapsulated sodium butyrate on growth, intestinal mucosal morphology, immune response and adhesive bacteria in juvenile common carp (Cyprinus carpio) pre-fed with or without oxidised oil. British Journal of Nutrition. Vol. 112, pp: 15-29.
19
Lückstädt, C., 2008. The use of acidifiers in fish nutrition. CAB Reviews: Perspectives in Agriculture, Veterinary Science, Nutrition and Natural Resources. Vol. 3, pp: 1-8.
20
Lim, C.; Lückstädt, C. and Klesius, P.H., 2010. Review: Use of organic acids, salts in fish diets. Global Aquaculture Advocate. Vol. 5, pp: 45-46.
21
Munakata, A. and Kobayashi, M., 2010. Endocrine control of sexual behavior in teleost fish. General and Comparative Endocrinology. Vol. 165, pp: 456-468.
22
Nermeen, M.A. and Naela, M.R., 2014. Eubiotic effect of a dietary acidifier (potassium diformate) on the health status of cultured Oreochromis niloticus. Journal of Advanced Research. Vol. 6, pp: 621-629.
23
Ng, W.K., 2015. Recent advances in the understanding and mitigation of EMS/AHPND. Aquaculture Asia Pacific. Vol. 11, pp: 35-39.
24
Ng, W.K. and Koh C.B., 2016. The utilization and mode of action of organic acids in the feeds of cultured aquatic animals. Reviews in Aquaculture. Vol. 0, pp: 1-27.
25
Owen, M.A.G.; Waines, P.; Bradley, G. And Davies, S., 2006. The effect of dietary supplementation ofsodium butyrate on the growth and microflora of Clarias gariepinus (Burchell 1822), Abstract from the 12th International Symposium Fish Nutrition and Feeding, Biarritz, France.
26
Pandey, A. and Satoh, S., 2008. Effects of organic acids on growth and phosphorus utilization in Rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Fisheries Science. V0l. 74, pp: 867-874.
27
Perdikaris, C.; Nathanailides, C.; Gouva, E.; Gabriel, U.U.; Bitchava, K.; Athanasopoulou, F. and Paschos, I., 2010. Size-relative effectiveness of clove oil as an anaesthetic for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum, 1792) and goldfish (Carassius auratus Linnaeus, 1758). Acta Veterinaria Brno. Vol. 79, pp: 481-490.
28
Pryor, G.S.; Royes, J.B.; Chapman, F.A. and Miles, R.D., 2003. Mannanoligosaccharides in fish nutrition: effects of dietary supplementation on growth and gastrointestinal villi structure in Gulf of Mexico sturgeon. North American Journal of Aquaculture. Vol. 65, pp: 106-111.
29
Ricke, S.C., 2003. Perspectives on the use of organic acids and short chain fatty acids as antimicrobials. Poultry Science. Vol. 82, pp: 632-639.
30
Ringo, E. and Strom, E., 1994. Microflora of arctic charr (Salvelinus alpinus): Gastrointestinal microflora of free-living fish and effect of diet and salinity on intestinal microflora. Aquaculture and Fisheries Management. Vol. 25, pp: 623-629.
31
Romano, N.; Koh, C.B. and Ng, W.K., 2015. Dietary microencapsulated organic acids blend enhances growth, phosphorus utilization, immune response, hepatopancreatic integrity and resistance against Vibrio harveyi in white shrimp, Litopenaeus vannamei. Aquaculture. Vol. 435, pp: 228-236.
32
Roberts, R.J., 2001. Fish Pathology. 3rd Edition. W. B. Saunders, Philadelphia. pp: 208-375.
33
Sales, J. and Janssens, G.P.J., 2003. Nutrient requirements of ornamental fish. Aquatic Living Resources. Vol. 16, pp: 533-540.
34
Salou, P.; Leroy, M.; Goma, G. and Pareilleux, A., 1991. Influence of pH and malate-glucose ratio on the growth kinetics of Leuconostoc oenos. Applied Microbiology and Biotechnology. Vol. 36, pp: 87-91.
35
Sarker, S. A.; Satoh, S. and Kiron, V., 2005. Supplementation of citric acid and amino acid chelated trace element to develop environment-friendly feed for red sea bream, Pagrus major. Aquaculture. Vol. 248, pp: 3-11.
36
Sell, J.L.; Angel, C.R.; Piquer, F.J.; Mallarino, E.G. and Al-Batshan, H.A., 1991. Development patterns of selected characteristics of the gastrointestinal tract of young turkey. Poultry Science. Vol. 70, pp: 1200- 1205.
37
Shah, S.Z.H.; Afzal, M.; Khan, S.Y.; Hussain, S.M. and Habib, R.Z., 2015. prospects of using citric acid as fish feed supplement.prospects of using citric acid as fish feed supplement. International Journal of Agriculture and Biology. Vol. 17, pp: 1-8.
38
Sheikholeslami Amiri, M.; Yousefian, M.; Yavari,V.; Safari, R. and Ghiyasi, M., 2012. Evaluation ofinulin as prebiotic on rainbow trout (Oncorhynchusmykiss) (Walbaum, 1972) immunity characteristicsand resistance to streptococcus sp infection. IranianJournal of Biology. Vol. 24, pp: 303-312.
39
Silvaa,B.C.; Jesusc, G.F.A.; Seiffertb, W.Q.; Vieirab, F.N.; Mouriñob, J.L.P.; Jatobác, A. and Nolasco-Soriad, H., 2016. The effects of dietary supplementation with butyrate and polyhydroxybutyrate on the digestive capacity and intestinal morphology of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei). Marine and Freshwater Behaviour and Physiology. Vol. 6, pp: 447-458.
40
Sing, K.W.; Kamarudin, M.S.; Wilson, J.J. and Azirun, M.S., 2014. Evaluation of blowfly (Chrysomya megacephala) maggot meal as an effective, sustainable replacement for fishmeal in the diet of farmed juvenile red tilapia (Oreochromis sp.). Pakistan Veterinary Journal. Vol. 34, pp: 288-292.
41
Sniffen, C.; Ballard, C.; Carter, M.; Cotanch, K.; Dann, H.; Grant, R. and Martin, S.A., 2006. Effects of malic acid on microbial efficiency and metabolism in continuous culture of rumen contents and on performance of mid-lactation dairy cows. Animal Feed Science and Technology. Vol. 127, pp: 13-31.
42
Sudagar, M.; Hosseinpoor, Z. and Hosseini, A., 2010. The use of citric acid as attractant in diet of grand sturgeon (Huso huso) fry and its effects on growing factors and survival rate. AACL Bioflux. Vol. 3, pp: 311-316.
43
Vielma, J. and Lall, S., 1997. Dietary formic acid enhances apparent digestibility of minerals in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Aquaculture Nutrition. Vol. 3, pp; 265-268.
44
Windmueller, H.G. and Spaeth, A.E., 1978. Identification of ketone bodies and glutamine as the major respiratory fuels in vivo for postabsorptive rat small intestine. Journal of Biological Chemistry. Vol. 253, pp: 69-76.
45
Yufera, M.; Moyano, F.J.; Astola, A.; Pousao, F.P. and Martınez, R.G., 2012. Acidic digestion in a teleost: postprandial and circadian pattern of gastric pH, pepsin activity, and pepsinogen and proton pump mRNAs expression. PLoS ONE. Vol. 7, pp: 1-9.
46
Zhu, Y.; Qiu, X.; Ding, Q.; Duan, M. and Wang, C., 2014. Combined effects of dietary phytase and organic acid on growth and phosphorus utilization of juvenile yellow catfish Pelteobagrus fulvidraco. Aquaculture. Vol. 430, pp: 1-8.
47
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی زیستگاههای مناسب برای گونه غیربومی تیلاپیای نیل (Oreochromis niluticus) براساس مدل های بوم شناختی در استان گلستان
تیلاپیا به علت رشد سریع و پرورش ساده و ارزان مورد توجه بسیاری از کشورهای جهان قرار گرفته است و از گونه های بهشدت مهاجمی هستند که معرفی آن به اکوسیستم های طبیعی در کشورهایی که خاستگاه این ماهی نیستند، می تواند به بحرانی جدی برای تنوع زیستی آن کشورها تبدیل شود. هدف این تحقیق بررسی شرایط اقلیمی استان گلستان و مقایسه شرایط موجود با نیازهای گونه تیلاپیای نیل و بررسی احتمال پراکنش این گونه در استان گلستان با استفاده از مدل پیش بینی پراکنش GARP و مشخص نمودن احتمال حضور این گونه در هر قسمت استان و بررسی راهکارهای مقابله با پراکنش ناخواسته این گونه در استان گلستان میباشد. در این بررسی داده هایی که برای پیش بینی پراکنش تیلاپیا درنظر گرفته شد، به عنوان مهم ترین دادههای اقلیم شناسی در پراکنش گونه های آب شیرین استفاده می شوند مانند دمای متوسط سالیانه، متوسط دما در گرم ترین ماه سال، متوسط دما در سردترین ماه سال، بارش ماهیانه، بارش سالیانه، متوسط طول روز و میزان رطوبت هوا. هم چنین از روش جک نایف جهت برآورد اهمیت هریک از داده های مذکور استفاده شده است. پیش بینی پراکنش تیلاپیا در استان گلستان در محیط GIS صورت گرفت. بر این اساس مناسب ترین زیستگاه های گونه تیلاپیای نیل در محدوده شهرستان های گنبدکاووس، آق قلا و گمیشان قرار دارند که دقیقاً تالاب ها و سدهای مهم استان در همین محدوده واقع شده اند و هم چنین براساس آمار موجود این سه شهرستان در حال حاضر مهم ترین مناطق تولید آبزیان استان گلستان می باشند.
http://www.aejournal.ir/article_99446_41ec11e8fb4cbe6696b489e1cc01bc8d.pdf
2019-09-23
155
162
تیلاپیای نیل
گونه مهاجم
پیش بینی پراکنش
مدل بوم شناختی
سامانه اطلاعات جغرافیایی
وحید
عباسی
v.abbaci@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
سیدعباس
حسینی
hoseini_abbas@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
رسول
قربانی
ghorbaninasrabadi@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
حسن
صالحی
hsalehi_ir@yahoo.com
4
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
حسین
عبدالحی
hosein_abdolhay@yahoo.com
5
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
اعظمی، ج. و مهدی رضایی، ن.، 1395. وضعیت معرفی و پرورش ماهی تیلاپیای نیل (Oreochromis niloticus) در ایران. مجله بهره برداری و پرورش آبزیان. دوره 5، شماره 4، صفحات 1 تا 12.
1
رفیعی، غ.ر.؛ جولاده رودبار، آ. و ایگدری، س.، 1396. مروری بر سیکلیدماهیان (Actinopterygii: Cichlidae) آب های داخلی ایران به همراه اولین گزارش از حضور تیلاپیای نیل (Oreochromis niloticus). مجله منابع طبیعی ایران. دوره 70، شماره 1، صفحات 1 تا 10.
2
شهسوارزاده، ر.؛ ترکش، م.؛ رحمتی، ز. و قاضی مرادی، م.، 1394. مدل سازی رویشگاه بالقوه گونه گیاهی کما (Ferula ovina)، با استفاده از مدل ژنتیک الگوریتم در فریدونشهر استان اصفهان. مجله تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران. جلد 31، شماره 6، صفحات 977 تا 987.
3
مخدوم، م.، 1390. شالوده آمایش سرزمین. چاپ یازدهم. انتشارات دانشگاه تهران.
4
Ashley, P.J., 2006. Fish welfare: Current issues in aquaculture, Applied Animal Behavior Science doi: 10.1016/ j.applanim.2006.09.001.
5
Ashley, P.J.; Sneddon, L.U., in press. Pain and fear in fish. In: Branson, E. (Ed.), Fish Welfare. Blackwell, Oxford.
6
Benstead, J.P.; De Rham, P.H.; Gattolliat, J.L.; Gibon, F.M.; Loiselle, P.V.; Sartori, M.; Sparks, J.S. and Stiassny, M.L., 2003. Conserving Madagascar's freshwater biodiversity. BioScience. Vol. 53, pp: 1101-1111.
7
Biswas, A.K.; Morita, T.; Yoshizaki, G.; Maita, M. and Takeuchi, T., 2005. Control of reproduction in Nile tilapia Oreochromis niloticus (L.) by photoperiod manipulation. Aquaculture. Vol. 243, pp: 229-239.
8
Braithwaite, V.A. and Huntingford, F.A., 2004. Fish and welfare: do fish have the capacity for pain perception and suffering? Anim. Welfare. Vol. 13, pp: S87-S92.
9
Borgeson, L.T., 2005. Effect of Replacing Fish Meal with Simpleor Complex Mixtures of Vegetable Ingredients in Diets Fed to Nile Tilapia (Oreochromis niloticus). Master of Science thesis, the Department of Animal and Poultry Science University of Saskatchewan, 6D34 Agriculture Building, 51 Campus Drive, Saskatoon SK S7N 5A8.
10
Chamberlain, G.W., 1993. Aquaculture trends and feed projections. J. World Aqua. Vol. 24, pp: 19-29.
11
Canonico, G.C.; Arthington, A.; McCrary, J.K. and Thieme, M.L., 2005. The effects of introduced tilapias on native biodiversity. Aquatic Conservation: Marine and Freshwater Ecosystems. Vol. 15, pp: 463-483.
12
ClientEarth. 2011. CFP reform proposal: subsidiary briefing. Sustainable aquaculture development within ecosystem -based fisheries management. 2 p.
13
Coad, B.W., 1998. Systematic biodiversity in the freshwater fishes of Iran. Italian J of Zoology. Vol. 65, pp: 101-108.
14
Coad, B.W., 2017. Freshwater Fishes of Iran. Available at http://www.briancoad.com (accessed on 12 July 2016).
15
Costa-Pierce, B.A (2002). In: B.A. Costa-Pierce(Ed.). Ecological Aquaculture, the Evolution of the Blue Revelution. Blackwell SienceLtd. Blackwell Publishing Company. 382 p.
16
Dunlop, R. and Laming, P., 2005. Mechanoreceptive and nociceptive responses in the central nervous system of goldfish (Carassius auratus) and trout (Oncorhynchus mykiss). J. Pain. Vol. 6, pp: 561-568.
17
Edwards, P.; Litle, D.C. and Yakupitiyage, A., 1997. A comparison of traditional and modified inland artisanal aquaculture system. Aquaculture Rese. Vol. 28, pp: 777-787.
18
FAO. 2004. Food and Agriculture Organizations of the United Nations. [Online](http://www.FAO.org/fi/statist/ statist. asp) (Oct 18 2004 date last accessed)
19
FAO. 1991. Environment and Sustainabilities in Fisheries.COF/91/3. Document presented at the 19th Session of the Committee on Fisheries, April 1-12. Food and Agriculture Organization of the United Nation, Rome. 23 p.
20
FAWC (Farmed Animal Welfare Council). 1996. Report on the Welfare of Farmed Fish. Surbiton, Surrey.
21
Fuselier, L., 2001. Impacts of Oreochromis mossambicus (Perciformes: Cichlidae) upon habitat segregation among cyprinodontids (Cyprinodontiformes) of a species flock in Mexico. Revista de biologia tropical. Vol. 49, pp: 647-656.
22
Guerrero III, R., 1998. Impact of tilapia introductions on the endemic fishes insome Philippine lakes and reservoirs. Aquaculture Asia. Bangkok. Vol. 3, pp: 16-17.
23
Hirzel, A.H.; Helfer, V. and Métral, F., 2001. Assessing habitat-suitability models with a virtual species. Ecological Modelling. Vol. 145, No. 2, pp: 111-121.
24
Jouladeh-Roudbar, A.; Vatandoust, S.; Eagderi, S.; Jafari-Kenari, S. and Mousavi-Sabet, H., 2015. Freshwater fishes of Iran; an updated checklist. Aquaculture, Aquarium, Conservation and Legislation, International Journal of the Bioflux Society (AACL Bioflux). Vol. 8, pp: 855-909.
25
Long, J.; Liang, Y.; Shoup, D.E.; Dzialowski, A.R. and Bidwell, J.R., 2014. GIS-based rapid assessment of bighead carp Hypophthalmichthys nobilis (Richardson, 1845) suitability in reservoirs. Management of Biological Invasions. Vol. 5, No. 4, pp: 363-370.
26
Lowe, M.R.; Wu, W.; Peterson, M.S.; Brown-Peterson, N.; William, J. and Slack, T., 2012. Survival, Growth and Reproduction of Non-Native Nile Tilapia II: Fundamental Niche Projections and InvasionPotential in the Northern Gulf of Mexico. Plosone. Vol. 7, No. 7, pp: 1-10.
27
Mckaye, K.R.; Stauffer, J.; Van den Berghe, E.P.; Vivas, R.; Perez, L.L.; McCrary, J.K.; Waid, R.; Konings, A.; Lee,W.J.andKocher,T.D.,2002. Behavioral, morphological and genetic evidence of divergence of the Midas cichlid species complex in two Nicaraguan crater lakes. Cuadernos de Investigación de la UCA. Vol. 12, pp: 19-47.
28
Morgan, D.L.; Gill, H.S.; Maddern, M.G. and Beatty, S.J., 2004. Distribution and impacts of introduced freshwater fishes in Western Australia. New Zealand Journal of Marine and Freshwater Research. Vol. 38, pp: 511-523.
29
Nelson, J.S.; Grande, T.C. and Wilson, M.V., 2016. Fishes of the World. John Wiley and Sons. 655 p.
30
Peterson, A.T. and Cohoon, K.P., 1999. Sensitivity of distributional prediction algorithms to geographic data completeness, Ecological Modelling. Vol. 117, pp: 159-164.
31
Peterson, M.; Slack, W. and Woodley, C., 2002. The influence of invasive, nonnative tilapiine fishes on freshwater recreational fishes in south Mississippi: spatial/temporal distribution, species associations, and trophic interactions. Fisheries, and Parks: Jackson, MI.
32
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه ریخت شناسی ماهی شاه کولی (Alburnus chalcoides) در طی رشد
ماهی شاه کولی با نام علمی Alburnus chalcoides (Gueldenstaedt, 1772) متعلق به خانواده کپور ماهیان (Cyprinidae) از ماهیان استخوانی با ارزش دریای خزر است. بررسی زمان شروع غذادهی، یکی از موارد قابل توجه درخصوص رشد لارو می باشد. در واقع، مشخص کردن روز باز شدن دهان ماهی و روز شروع تغذیه فعال و غذای مصنوعی (پلت) بر رشد ماهی موثر است مخصوصاً این که ماهی شاه کولی بیش تر از منابع پروتئینی تغذیه میکند و این سرعت هضم و جذب مواد غذایی را افزایش میدهد. ماهی شاه کولی از روز پنجم بعد از تفریخ دهانش باز شد و به شکل یک شکاف دیده میشد. به منظور بررسی ویژگی های ریخت شناسی لاروها و بچه ماهیها 10 عدد نمونه درنظر گرفته شد. طول لارو در این روز 2/2±4/6 میلی متر و وزن 0/010 گرم است و در این روز لارو میتواند از غذای محیطی داخل آب استفاده کند اما با توجه به این که سایز دهان این ماهی در روز هشتم به اندازه مناسبی میرسد و این اندازه 84 میکرومتر است (طول 4/4±5/5 میلی متر و وزن 0/013 گرم). این روز به عنوان شروع تغذیه پلت محاسبه شد که میتوان علاوه بر غذای محیطی از غذای پلت (دستی) نیز برای لارو استفاده کرد. هدف از انجام این تحقیق تعیین زمان مناسب شروع غذادهی به ماهی میباشد.
http://www.aejournal.ir/article_99349_bf550b404f533f694d18291fb3f25856.pdf
2019-09-23
163
172
ماهی شاه کولی
مورفولوژی
رشد
تغذیه
مسرور
ذاکری نسب
m.zakeri_mzn@yahoo.com
1
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
شهلا
جمیلی
shahlajamili45@yahoo.com
2
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
علیرضا
ولی پور
valipour40@gmail.com
3
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
سید محمدرضا
فاطمی
reza_fatemi@hotmail.com
4
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
احسان
رمضانی فرد
eramezanifard@gmail.com
5
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
Chakrabarti, R.; Rathore, R.M.; Mittal, P. and Kumar, S., 2006. Functional changes in digestive enzymes and characterization of proteases of silver carp and bighead carp hybrid, during early ontogeny. Aquaculture. Vol. 253, pp: 694-702.
1
Chapman, D.C. and George, A., 2011. Developmental rate and behavior of early life stages of Bighead Carp and Silver Carp. 62 p.
2
Dabrowski, K. and Bardega, R., 1984. Mouth size and predicted food size preferences of larvae of three cyprinid fish species. Aquaculture. Vol. 40, pp: 41-46.
3
Dos-Santos, M.; Arantes, F.; Santiago, K. and Dos-santos, E.J., 2015. Morphological characteristics of the digestive tract of Schizodon knerii (Steindachner, 1875), (Characiformes: Anostomidae): An anatomical, histological and histochemical study. Vol. 87, No. 2, pp: 867-878.
4
Gawlicka, A.; Parent, B.; Horn, M.H.; Ross, N.; Opstad, I. and Torrissen, O.J., 2000. Activity of digestive enzymes in yolk-sac larvae of Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus): indication of readiness for first feeding. Aquaculture.Vol. 184, pp: 303-314.
5
Gozlan, E.R.; Gordon, H. and Noel, T., 1999. Early development of the sofie, Chondrostoma toxostoma. Environmental biology of fishes. Vol. 56, pp: 67-77.
6
Hazzaa, R. and Hussein, A., 2007. Larval Development of Himri, Barbus luteus (Cyprinidae: Cypriniformes) Reared in the Laboratory. Turkish Journal of Zoology. Vol. 31, pp: 27-33.
7
He, T.; Xiao, Zh.; Liu, Q.; Ma, D.; Xu, Sh.; Xiao, Y. and Li, J., 2012. Ontogeny of the digestive tract and enzymes in rock bream Oplegnathus fasciatus larvae. J. Fish Physiol Biochem. Vol. 38, pp: 297-308.
8
Jafari, M.; Kamarudin, M.S.; Saad, C.R.; Arshad, A.; Oryan, S. and Bahmani, M., 2009. Development of Morphology in Hatchery-Reared Rutilus frisii kutum Larvae. European Journal of Scientific Research. Vol. 38, No. 2, pp: 296-305.
9
Kim, B.G.; Divakaran, S.; Brown, C.L. and Ostrowski, A., 2001. Comparative digestive enzyme ontogeny in two marine larval fishes: Pacific threadfin (Polydactylus sexfilis) and bluefin trevally (Caranx melampygus). Journal of Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 24, pp: 225-241.
10
Khoshnood, Z.; Jamili, SH.; Khodabandeh, S.; Mashinchian moradi, A. and Motalebi, A., 2014. Studying the Structure and Ultrastructure and Immunolocalization of the Gill Chloride cells in Caspian Kutum, Rutilus frisii kutum Fry. Journal of Animal Researches, Vol. 27, No. 4,
11
pp: 498- 508.
12
Rajabi Nezhad, R. and Azari Takami, G., 2009. A study of feeding habits of Caspian Shemaya (Shah-Koolee) Chalcalburnus chalcoides (Guldenstadt, 1772) in the Sefidrood river. Journal of marine biology. Vol. 1, No. 3, pp: 45-63.
13
Ramezani-Fard, E.; Kamarudin, M.S.; Harmin, S.A.; Saad, C.R.; Abd Satar, M.K. and Daud, S.K., 2011. Ontogenic development of the mouth and digestive tract in larval Malaysian mahseer, Tor tambroides Bleeker,1854. Applied Ichthyology. Vol. 27, pp: 920-927.
14
Ronnestad, R.; Dominguez, R.P. and Tanaka, M., 2000. Ontogeny of digestive tract functionality in Japanese flounder, Paralichthys olivaceus studied by in vivo microinjection: pH and assimilation of free amino acids. Fish physiology and biochemistry. Vol. 22, pp: 225-235.
15
Ronnestad, I.; Koven, W.M.; Tandler, A.; Harel, M. and Fyhn, H.J, 1998. Utilisation of yolk fuels in developing eggs and larvae of European sea bass (Dicentrarchus labrax). Aquaculture. Vol. 162, pp: 157-170.
16
Theilacker, A., 1978. Effect of star vatton on the histological and morphological characteristics of jack mackerel, Trachurus symmetricus larvae. Fishery bulletin. Vol. 76, No. 2, pp: 403-414.
17
Okan Kamaci, H.; Suzer, C.; Coban, D.; Saka, S. and Firat, K., 2010. Organogenesis of exocrine pancreas in sharpsnout sea bream (Diplodus puntazzo) larvae: characterization of trypsin expression. J. Fish Physiol Biochem. Vol. 36, pp: 993-1000.
18
Winkler, H. and Orellana, C.P., 1992. The costs of mixed prey for a planktivorous cyprinid, Chalcalburnus chalcoides mento. Journal of biology Environmental Fish. Vol. 35, No. 1, pp: 85-93.
19
Yaghoubi, M.; Amiri, B.; Nematollahi, M.A. and Yelghi, S., 2014. Histological development of the alimentary channel of Caspian Roach (Rutilus rutilus caspicus). Journal of Fisheries. Vol. 67, No. 4, pp: 625- 639.
20
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر سطوح مختلف استات سدیم جیره بر کارآیی رشد و فعالیت آنزیم های گوارشی روده ماهی طلایی (Carassius auratus)
در این تحقیق، تأثیر سطوح مختلف استات سدیم جیره بر رشد و فعالیت آنزیم های گوارشی روده ماهی طلایی (Carassius auratus) مورد مطالعه قرار گرفت. به این منظور 120 قطعه ماهی طلایی با وزن متوسط 1/29±14/24 گرم در 4 تیمار و 3 تکرار تقسیم شدند. تیمارها شامل غلظت های متفاوتی از نمک استات سدیم با مقادیر صفر (شاهد)، 2/5، 5 و 10 گرم به ازای هر کیلوگرم غذا بود. ماهی ها روزانه 3 بار در حد سیری و به مدت 75 روز غذادهی شدند. هر دو هفته یک بار زیست سنجی انجام شد و در پایان دوره آزمایش در هر تیمار از 6 ماهی جهت سنجش فعالیت آنزیم های پروتئاز و لیپاز نمونه برداری شد. نتایج به دست آمده نشان داد ماهیان تغذیه شده با 5 گرم نمک استات سدیم در هرکیلوگرم غذا، دارای بیش ترین وزن نهایی بودند، به طوری که اختلاف معنی دار آماری بین این تیمار در مقایسه با سایر تیمارها وجود داشت (0/05>P) اما تفاوت معنی دار آماری در دیگر شاخص های رشد اندازه گیری شده بین تیمار شاهد و تیمارهای تغذیه شده با نمک استات سدیم مشاهده نشد (0/05<P). از لحاظ میزان فعالیت آنزیم های لیپاز و پروتئاز نیز بین تیمارهای مختلف اختلاف معنی دار آماری مشاهده نشد (0/05<P). نتایج آزمایش کنونی نشان داد که استفاده از 5 گرم برکیلوگرم نمک استات سدیم در جیره غذایی ماهی طلایی می تواند باعث افزایش رشد این ماهی شده ولی تأثیری بر فعالیت آنزیم های گوارشی روده ندارد.
http://www.aejournal.ir/article_99353_c4518f4d97fd83391dfdc7c9d102c0a5.pdf
2019-09-23
173
180
نمک های ارگانیک
آنزیم گوارشی
شاخص های رشد
ماهی طلایی (Carassius auratus)
عاطفه
رستم زاده
atefehrostamzad137292@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
حمید
علاف نویریان
hamidnavi1397@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
LEAD_AUTHOR
میر مسعود
سجادی
mmsajjadi@hotmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
سید حسین
حسینی فر
hoseinifar@gau.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
مقدسی، ب.؛ منوچهری، ح. و اهدایی، م.، 1389. بررسی امکان رنگ آمیزی مصنوعی ماهیان گرین ترور (Aequidens rivulatus) از طریق تزریق. مجله بیولوژی دریا. سال 2، شماره 1، صفحات 57 تا 64.
1
Baruah, K.; Pal, A.K.; Sahu, N.P.; Jain, K.K.; Mukherjee, S.C. and Debnath, D., 2005. Dietary protein level, microbial phytase, citric acid and their interactions on bone mineralization of Labeo rohita (Hamilton) juveniles. Aquaculture Research. Vol. 36, pp: 803-812.
2
Boskou, G. and Debevere, J., 2000. Shelf life extension of cod fillets with an acetate buffer spray prior to packaging under modified atmosphere. Food Additives and Contaminants. Vol. 17, pp: 17-25.
3
Cahu, C.; Zambonino Infante, J.; Quazuguel, P. and Le Gall, M., 1999. Protein hydrolysate vs. fish meal in compound diets for 10-day old sea bass Dicentrarchus labrax larvae. Aquaculture. Vol. 171, pp: 109-119.
4
Castillo, S.; Rosales, M.; Pohlenz, C. and Gatlin, D., 2014. Effects of organic acids on growth performance and digestive enzyme activities of juvenile red drum Sciaenops ocellatus. Aquaculture. Vol. 433, pp: 6-12.
5
Correa da Silva, B.; Nascimento Vieira, F.; Pedreira Mouri, L.; Bolivar, N. and Quadros Seiffert, W., 2014. Butyrate and propionate improve the growth performance of Litopenaeus vannamei. Aquaculture Research. Vol. 35, pp: 1-12.
6
Da Silva, B.C.; do Nascimento Vieira, F.; Mouriño, J.L.P.; Ferreira, G.S. and Seiffert, W.Q., 2013. Salts of organic acids selection by multiple characteristics for marine shrimp nutrition. Aquaculture. Vol. 384, pp: 104-110.
7
De Wet, L., 2005. Organic acids as performance enhancers. Aqua Feeds: Formulation and Beyond. Vol. 2, pp: 12-14.
8
Ergun, S. and Erdem, M., 2000. Effect of natural and synthetic carotenoid sources on pigmentation of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Turk. J. Vet. Anim. Sci. Vol. 24, pp: 391-402.
9
Garcia-Carreno, F.L. and Haard, N.F., 1993. Characterization of proteinase classes in Langostilla pleuroncodes planipes and Crayfish Pacifastacus astacus extracts. Journal of Food Biochemistry. Vol. 17, pp: 97-113.
10
Gislason, G.; Olsen, R. and Ringø, E., 1994. Lack of growth‐stimulating effect of lactate on Atlantic Salmon, Salmo salar L. Aquaculture Research. Vol. 25, pp: 861-862.
11
Gouveia, L.; Rema, P.; Pereira, O. and Empis, J., 2003. Colouring ornamental fish (Cyprinus carpio and Carassius auratus) with microalgal biomass. Aquaculture Nutrition. Vol. 9, pp: 123–129.
12
Hossain, M.A.; Pandey, A. and Satoh, S., 2007. Effects of organic acids on growth and phosphorus utilization in red sea bream Pagrus major. Fisheries Science. Vol. 73, pp: 1309-1317.
13
Hoseinifar, S.H.; Roosta, Z.; Hajimoradloo, A. and Vakili, F., 2015. The effects of Lactobacillus acidophilus as feed supplement on skin mucosal immune parameters, intestinal microbiota, stress resistance and growth performance of black swordtail (Xiphophorus helleri). Fish & Shellfish Immunology. Vol. 42, No. 2, pp: 533-538.
14
Hoseinifar, S.H.; Sun, Y.Z. and Caipang, C.M., 2016. Short chain fatty acids as feed supplements for sustainable aquaculture: an updated view. Aquaculture Research. Vol. 48, pp: 1380-1391.
15
Iijima, N.; Tanaka, S. and Ota, Y., 1998. Purification and characterization of bile salt-activated lipase from the hepatopancreas of red sea bream (Pagrus major). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 18, pp: 59-69.
16
Lim, C.; Lückstädt, C.; Webster, C.D. and Kesius, P., 2015. Organic Acids and Their Salts. In: Dietary Nutrients, Additives, and Fish Health. Edited by Lee,C.S.; Lim, C.; Delbert, M. and Gatlin, D., Willy Blackwell. USA. pp: 305-319.
17
Lopez-Vasquez, K.; Castro-Perez, C.A. and Val, A.L., 2009. Digestive enzymes of eight Amazonian teleosts with different feeding habits. Journal of Fish Biology. Vol. 74, pp: 1620-1628.
18
Lückstädt, C., 2006. Acidifiers in aquaculture prove beneficial, Feed Mix. Vol. 14, pp: 11-12.
19
Munakata, A. and Kobayashi, M., 2010. Endocrine control of sexual behavior in teleost fish. General and Comparative Endocrinology. Vol. 165, pp: 456-468.
20
Nandeesha, M.C.; Gangadhar, B.; Keshavanath, P. and Varghese, T.J., 2000. Effect of dietary sodium chloride supplementation on growth, biochemical composition and digestive enzyme activity of young Cyprinus carpio (Linn.) and Cirrhinus mrigala (Ham.). Journal of Aquaculture in the Tropics. Vol. 15, No. 2, pp: 135-144.
21
Nermeen, M.A. and Naela, M.R., 2014. Eubiotic effect of a dietary acidifier (potassium diformate) on the health status of cultured Oreochromis niloticus. Journal of Advanced Research. Vol. 6, pp: 621-629.
22
Ng, W.K.; Koh, C.B.; Sudesh, K. and Siti‐Zahrah, A., 2009. Effects of dietary organic acids on growth, nutrient digestibility and gut microflora of red hybrid tilapia, Oreochromis sp., and subsequent survival during a challenge test with Streptococcus agalactiae. Aquaculture Research. Vol. 40, No. 13, pp: 1490-1500.
23
Owen, M.; Waines, P.; Bradley, G. and Davies, S., 2006. The effect of dietary supplementation of sodium butyrate on the growth and microflora of Clarias gariepinus (Burchell 1822). Proceedings of the XII International Symposium on Fish Nutrition and Feeding. Biarritz, France. 147 p.
24
Perdikaris, C.; Nathanailides, C.; Gouva, E.; Gabriel, U.U.; Bitchava, K.; Athanasopoulou, F. and Paschos, I., 2010. Size-relative effectiveness of clove oil as an anaesthetic for rainbow trout and goldfish (Carassius auratus). Acta Veterinaria Brno. Vol. 79, pp: 481-490.
25
Pérez-Jiménez, A.; Guedes, M.J.; Morales, A.E. and Oliva-Teles, A., 2007. Metabolic responses to short starvation and refeeding in (Dicentrarchus labrax): Effect of dietary composition. Aquaculture. Vol. 265, pp: 325-335.
26
Ramsden, S.R.; Smit, T.J.; Shaw, B.J. and Handy, R.D., 2009. Dietary exposure to titanium dioxide nanoparticles in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): No effect on growth, but subtle biochemical disturbances in the brain. Ecotoxicology. Vol. 18, pp: 939-951.
27
Ramli, N.; Heindl, U. and Sunanto, S., 2005. Effect of potassium-diformate on growth performance of tilapia challenged with Vibrio anguillarum. In World Aquaculture Society Conference. Bali, Indonesia. January 2005.
28
Reda, R.M.; Mahmoud, R.; Selim, K.M. and El-Araby, I.E., 2016. Effects of dietary acidifiers on growth, hematology, immune response and disease resistance of Nile tilapia, Oreochromis niloticus. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 50, pp: 255-262.
29
Ringø, E.; Olsen, R.E. and Castell, J.D., 1994. Effect of dietary lactate on growth and chemical composition of Arctic charr Salvelinus alpinus. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 25, pp: 483-486.
30
Romano, N.; Koh, C.B. and Ng, W.K., 2015. Dietary microencapsulated organic acids blend enhances growth, phosphorus utilization, immune response, hepatopancreatic integrity and resistance against Vibrio harveyi in white shrimp, Litopenaeus vannamei. Aquaculture. Vol. 435, pp: 228-236.
31
Rungruangsak-Torrissen, K.; Moss, R.; Andersen, L.; Berg, A. and Waagbo, R., 2006. Different expressions of trypsin and chymotrypsin in relation to growth in Atlantic salmon (Salmo salar L). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 32, pp: 7-23.
32
Rungruangsak‐Torrissen, K.; Rustad, A.; Sunde, J.; Eiane, S.A.; Jensen, H.B.; Opstvedt, J.; Nygård, E.; Samuelsen, T.A.; Mundheim, H. and Luzzana, U., 2002. In vitro digestibility based on fish crude enzyme extract for prediction of feed quality in growth trials. Journal of the Science of Food and Agriculture. Vol. 82, pp: 644-654.
33
Sallam, K.H.I. and Samejima, K., 2004. Microbiological and chemical quality of ground beef treated with sodium lactate and sodium chloride during refrigerated storage. Lebensmittel-Wissenschaft und-Technologie/ LWT-Food Science and Technology. Vol. 37, pp: 865-871.
34
Sarker, M.S.A.; Satoh, S. and Kiron, V., 2007. Inclusion of citric acid and/or amino acid-chelated trace elements in alternate plant protein source diets affects growth and excretion of nitrogen and phosphorus in red sea bream Pagrus major. Aquaculture. Vol. 262, pp: 436-443.
35
Sherif, A.H. and Doaa, M.G., 2013. Studies on the effect of acidifier on cultured Oreochromis niloticus fish. Journal of the Arabian Aquaculture Society. Vol. 8, pp: 229-236.
36
Silva, B.C.; Nolasco-Soria, H.; Magallon-Barajas, F.; Civera-Cerecedo, R.; Casillas-Hernandez, R. and Seiffert, W., 2015. Improved digestion and initial performance of whiteleg shrimp using organic salt supplements. Aquaculture Nutrition. Vol. 385, pp: 202-301.
37
Sunde, J.; Taranger, G. and Rungruangsak-Torrissen, K., 2001. Digestive protease activities and free amino acids in white muscle as indicators for feed conversion efficiency and growth rate in Atlantic salmon (Salmo salar L). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 25, pp: 335-345.
38
Tabrizi, J.M.; Barzeghar, A.; Farzampour, S.; Mirzaii, H. and Safarmashaei, S., 2012. Study of the effect of prebiotic (Saccharomyces cerevisiae) and acidifier on growth parameters in grower's rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Annals of Biological Research. Vol. 3, pp: 2053-2057.
39
Thaela, M.J.; Jensen, M.S.; Pierzynowski, S.G.; Jakob, S. and Jensen, B.B., 1998. Effect of lactic acid supplementation on pancreatic secretion in pigs after weaning. Journal of Animal and Feed Sciences. Vol. 7, pp: 181-183.
40
Whittington, R. and Chong, R., 2007. Global trade in ornamental fish from an Australian perspective: the case for revised import risk analysis and management strategies. Preventive Veterinary Medicine. Vol. 81, No. 1, pp: 92-116.
41
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی شاخص های رشد و مرگ و میر ماهی کلمه Rutilus rutilus caspicus در آب های جنوب دریای خزر (استان گلستان)
در این مطالعه خصوصیات زیستی و پویایی جمعیت ماهی کلمه Yakovlev,1870) Rutilus rutilus caspicus) در آب های ساحلی استان گلستان مورد مطالعه قرار گرفت. در طول نمونه برداری، تعداد 384 عدد نمونه ماهی از فروردین 1394 تا اسفند 1395 به وسیله تورهای پره ساحلی و تور گوشگیر صید و جمع آوری گردید. کوچک ترین و بزرگ ترین طول کل ماهیان صید شده به ترتیب 14 و 26 سانتی متر و هم چنین حداقل و حداکثر وزن آن ها به ترتیب 28 و 246 گرم بود. مقدار شاخص b (رابطه طول _ وزن) برای دو جنس نر و ماده به ترتیب برابر با 3/012 و 3/205 برآورد شد. برای به دست آوردن پارامترهای رشد از تعیین سن فلس و توزیع فراوانی طولی استفاده شد. معادله فون برتالانفی براساس توزیع فراوانی طولی برای جنس نر و جنس ماده به دست آمد. میزان وزن بی نهایت ∞W نزدیک به 216/466 گرم در جنس نر و 259/ 77 گرم در جنس ماده برآورد شد. میزان مرگ طبیعی و صیادی در دو جنس نر و ماده به ترتیب 1/13، 0/401 و 0/84، 0/673 در سال محاسبه گردید. هم چنین ضریب بهره برداری 0/26 و 0/43 در جنس نر و ماده به دست آمد. شاخص کارآیی رشد (فای پریم مونرو) به ترتیب برای جنس نر و ماده، 2/57=׳Φ و 2/48=׳Φ می باشد. گروه های سنی شامل یک تا چهار سال بوده که بیش ترین فروانی متعلق به گروه های 1+ تا 2+ تعیین شد.
http://www.aejournal.ir/article_99407_3129ef19a271a56cf854feb463745b9a.pdf
2019-09-23
181
190
استان گلستان
دریای خزر
ماهی کلمه
مرگ و میر
بهزاد
رهنما
rahnama.behzad@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
احسان
کامرانی
ezas47@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
اصغر
عبدلی
a_abdoli@sbu.ac.ir
3
گروه تنوع زیستی و مدیریت اکوسیستم های پژوهشکده علوم محیطی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
AUTHOR
ابوالفضل
ناجی
abolfazlnaji@hormozgan.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
هادی
رییسی
raeisi_hadi@yahhoo.com
5
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبد کاووس، ایران
AUTHOR
آژیر، م.، 1384. گزارش نهایی پروژه برخی از خصوصیات زیستی سه گونه شوریده، حلوا سیاه و سنگسر کاکان به منظور بهینه سازی فصل صید در دریای عمان. 108 صفحه.
1
پقه، ا.؛ مقصودلو، ت. و عبدلی، ا.، 1383. مطالعه سن و رشد ماهی کلمه (Rutilus rutilus caspicus) تالاب گمیشان (جنوب شرقی دریای خزر). مجله علوم کشاورزی ومنابع طبیعی. سال 11، شماره 4، صفحات 151 تا 162.
2
خسروی، م.؛ شمسایی مهرجان، م. و اکرمی. ر.، 1389. تأثیر سطوح متفاوت پری بیوتیک اینولین جیره غذایی بر عملکرد رشد و ترکیب لاشه در بچه ماهی کلمه. مجله تحقیقات منابع طبیعی تجدید شونده. سال 1، شماره 2، صفحات 21 تا 34.
3
کشیری، ح.؛ شعبانی، ع. و شعبانپور، ب.، 1391. بررسی تنوع ژنتیکی ماهی کلمه خزر در مناطق قره سو و گمیشان به روش مایکروستلایت. مجله زیست شناسی ایران. جلد 25 ، شماره 1، صفحات 139 تا 147.
4
ندافی، ر.؛ مجازی امیری، ب.؛ کرمی، م.؛ کیابی، ب. و عبدلی، ا.، 1381. بررسی بعضی ویژگی های زیست شناسی ماهی کلمه ترکمنی در تالاب گمشان. مجله علمی شیلات. سال 11، شماره 3، صفحات 103 تا 126.
5
Aires-da-Silva, A.M. and Gallucci, V.F., 2007. Demographic and risk analyses applied to management and conservation of the blue shark (Prionace glauca) in the North Atlantic Ocean. Marine and Freshwater Research. Vol. 58, pp: 570-580.
6
Birstein, V.J.; Ruban, G.; Ludwig, A.; Doukakis, P. and DeSalle, R., 2005. The enigmatic Caspian Sea Russian sturgeon: how many cryptic forms does it contain? Systematics and Biodiversity. Vol. 3, No. 2, pp: 203-218.
7
Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology. South asian publishers. PVT Ltd. New Delhi. 157 p.
8
Burnham, K.P. and Anderson, D.R., 2001. Kullback Leibler information as a basis for strong inference in ecological studies. Wildlife Research. Vol. 28, pp: 111-119.
9
Chappaz, R.; Brun, G. and Olivari, G., 1990. Les fecterus de developementdu gardon (Rutilus rutilus), introduit dans une retenue oligotrophe recente: analyse des parameters mesologiques (temperatures) et biologiques. C.R. Acadsci. Vol. 3, No. 310, pp: 27-33.
10
Chen, S. and Watanabe, S., 1989. Age dependence of natural mortality coefficient in fish populations dynamics. Nippon Suisan Gakkaishi. Vol. 55, pp: 205-208.
11
Froese, R., 2006. Cube law, condition factor and weight-length relationships: history, meta analysis and recommendations. J. Appl. Ichthyol. Vol. 22, pp: 241-253.
12
Gayanilo, F.C. and Pauly, D., 1997. Computed information series fisheries, FAO-ICLARM stock assessment tools. Reference manual. Rome Italy. 262 p.
13
Gunderson, D.R. and Dygert, P.H., 1988. Reproductive effort as a predictor of natural mortality rate. J. Cons. Int. Explor Mer. Vol. 44, pp: 200-209.
14
Gunderson, D.R., 1980. Using r-K selection theory to predict natural mortality. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 37, pp: 2266-2271.
15
Guthruf, J., 2002. desrotouges in luganer-see (Kanton TI). BUWAL, Mitt. Fisch. Vol. 74, 9 p.
16
Haddon, M., 2011. Modelling and quantitative methods in fisheries, CRC Press. Institute of Geography NASA.
17
Holcík, J. and Hensel, K., 1972. Ichthyological hand book. SRZ Bratislava. 220 p. (in Slovak).
18
Katsanevakis, S. and Maravelias, C.D., 2008. Modelling fish growth: multi-model inference as a better alternative to a priori using von Bertalanffy equation. Fish and Fisheries. Vol. 9, pp: 178-187.
19
Khorshidian, K., 2000. Comparative study of fishing fleet in Bushehr province. Iranian Fisheries Research Organization. Tehran-Iran. pp: 10-22. (in Persian).
20
Kiabi, B.; Abdoli, A. and Naderi, M., 1999. Status of the fish fauna in the south Caspian Basin of Iran. J. Zoologyin the middle East. Vol. 18, pp: 57-65.
21
Kirjasnient, M. and Valtonen, T., 1997. Size-dependent over-winter mortality of young-of year roach )Rutilus rutilus.( English Biology of fishes. Vol. 50, pp: 451-456.
22
Kottelat, M. and Freyhof, J., 2007. Handbook of European freshwater fishes. Publications Kottelat, Cornol and Freyhof, Berlin. 646 p.
23
Le Robert, M., 2001. Report of the First Metting of the WECAFC Ad Hoc Working Groupe on the Development of Sustainable Moored Fish Aggregating Device Fishing in the Lesser Antilles, FAO Fisheries Report No. 683.
24
Mann, R.H.K., 1996. Environmental requirements of European non-salmonid fish in rivers. Hydrobiologia. Vol. 323, No. 3, pp: 223-235.
25
Mfiller, R. Jfirg Meng, H., 1986. Factors governing the growth rate of roach Rutilus rutilus (L.) in pre-alpine Lake Sarnen Schweiz. Z. Hydrol. Vol. 48, No. 2, pp: 137-156.
26
Moutopoulos, D.K. and Stergiou, K.I., 2002. Length weight and length-length relationships of fish species from Aegean Sea (Greece). Jouranl of Applied Ichthyology. Vol. 18, pp: 200-203.
27
Nikolsky, G.V., 1969. Theory of Fish Population Dynamics. Otto Science Publishers, Koenigstein. 317 p.
28
Pauly, D., 1983. Some simple methods for the assessment of tropical fish stocks. FAO Fish. Tech. Pap. 234, Rome. 52 p.
29
Punt, A.E.; Pribac, F.; Walker, T.I.; Taylor, B.L. and Prince, J.D., 2000. Stock assessment of school shark, Galeorhinus galeus, based on a spatially explicit population dynamics model. Marine and Freshwater Research. Vol. 51, pp: 205-220.
30
Sparre, P. and Venema, S.C., 1998. Introduction to tropical fish stock assessment. part 1. Manual FAO Fish, Tech. Pap. 306. FAO, Rome, Italy. 407 p.
31
Sturges H.A., 1926. The choice of a class interval. Journal of the American Statistical Association. Vol. 21, pp: 65- 69.
32
Volta, P. and Jepsen, N., 2008, 'The recent invasion of Rutilus rutilus (L.) (Pisces: Cyprenidae) in a large South Alpine lake: Lago Maggiore' Journal of Limnology. Vol. 67, No. 2, pp: 163-170.
33
Wüstemann, O. and Kammerad, B., 1995. Der Hasel, Leuciscus leuciscus. Westarp Wissenschaften, Magdeburg, Germany. 195 p.
34
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر غلظت های مختلف اسیدفولیک و ریبوفلاوین بر برخی از شاخص های رشد، خونی و ایمنی بچه ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
مطالعه حاضر به منظور ارزیابی تأثیر غلظت های مختلف اسیدفولیک و ریبوفلاوین بر برخی از شاخص های رشد، خونی و ایمنی بچه ماهیان قزل آلای رنگین کمان طراحی و اجرا گردیده است. بدین منظور تعداد 891 قطعه بچه ماهی با متوسط وزن 0/2± 6/5 گرم به طور تصادفی در 27 مخزن فایبرگلاس در قالب 9 تیمار (33 قطعه ماهی در هر مخزن) توزیع شدند. بچه ماهیان قزل آلای رنگین کمان با جیره معمولی و جیره حاوی سطوح مختلفی از اسیدفولیک (صفر، 6 و 10 میلی گرم) و ریبوفلاوین (صفر، 20 و 30 میلی گرم) مورد تغذیه قرار گرفتند. در پایان دوره 60 روزه پرورش، 30 عدد ماهی از هر تیمار به طور تصادفی انتخاب و پس از اندازه گیری فاکتورهای رشد، خونگیری از آن ها انجام شد. نتایج نشان دادند بیش ترین میانیگن افزایش وزن بدن، ضریب رشد ویژه، ضریب رشد روزانه، سلول های سفید خون، سلول های قرمز خون، هموگلوبین و هماتوکریت در ماهیان تغذیه شده با جیره حاوی 20 میلی گرم ریبوفلاوین و 10 میلی گرم اسیدفولیک مشاهده شد که اختلاف معنی داری را با گروه شاهد و سایر تیمارها نشان داد (0/05>P). از نظر میزان بازماندگی اختلاف معنی داری بین تیمارهای مختلف مشاهده نشد. براساس نتایج به دست آمده بهترین فرمول پیشنهادی برای تغذیه ماهیان قزل آلای رنگین کمان انگشت قد، ترکیبی از 20 میلی گرم ریبوفلاوین و 10 میلی گرم اسیدفولیک در هر کیلوگرم از غذای خشک است که با توجه به مقدار مصرف اندک ویتامین ها استفاده از این فرمول در مزارع پرورش ماهیان سردآبی مقرون به صرفه بوده و دارای توجیه اقتصادی می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_99534_7410bc5a8b0e5b90e5068bff1ae017ce.pdf
2019-09-23
191
198
اسیدفولیک
ریبوفلاوین
رشد
شاخص های خونی و ایمنی
قزل آلای رنگین کمان
سهیل
لامعلی حسن کیاده
soheillameeihassankiadeh@yahoo.com
1
گروه شیلات، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
AUTHOR
مهدی
محمدعلیخانی
mohammadalikhani@yahoo.com
2
باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
سلطنت
نجار لشگری
se_lashgari@yahoo.com
3
مرکز تحقیقات ماهیان سردآبی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تنکابن، ایران
AUTHOR
رقیه
محمودی
roghaye.mahmodi@gmail.com
4
مرکز تحقیقات ژنتیک و اصلاح نژاد ماهیان سردآبی شهید مطهری، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، یاسوج، ایران
LEAD_AUTHOR
سقا،ح.ر.،1382. کتاب جامع تجهیزات آزمایشگاهی و فرآورده های تشخیصی. انتشارات کتاب میر. 1246 صفحه.
1
صیادبورانی، م.؛ خارا، ح.؛ صیادبورانی، م. و فخارزاده، م.ا.، 1393. تأثیر سطوح مختلف ویتامین C و ویتامین E در جیره را بر پارامترهای رشد و سیستم ایمنی ماهی آزاد دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. سال 23، شماره 4، صفحات 85 تا 96.
2
عاشوری، ع.ر.؛ خارا، ح.؛ یزدانی ساداتی، م.ع. و کاظمی، ر.، 1393. بررسی تأثیر ویتامین ای توکوفرول (E) و ریبوفلاوین (B2) بر فاکتورهای خونی و ایمنی بچه ماهی شیپ. مجله فیزیولوژی و تکوین جانوری. جلد 8، شماره 1، صفحات 17 تا 22.
3
عامری مهابادی،م.، 1378. روش های آزمایشگاهی هماتولوژی دامپزشکی. انتشارات دانشگاه تهران. 126 صفحه.
4
مجابی،ع. و حیدرنژاد،ا.، 1382. خون شناسی دامپزشکی و روش های آزمایشگاهی. انتشارات سازمان تحقیقات و آموزش کشاورزی. 214 صفحه.
5
Cowey, C.B. and Roberts, R.J., 1978. Nutritional pathology of teleosts. Fish Pathology. Bailliere Tindall, London. InRoberts, R.J., (ed.) 318 P.
6
Cowey, C.B. and Woodward, B., 1993. The Dietary Requirement of Young Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) for Folic Acid. Journal of Nutration. Vol. 123, pp: 1594-1600.
7
Fang Deng, D. and Wilson, R., 2003. Dietary riboflavin requirement of juvenile Sunshine bass (Morone chrysops × Morone saxatilis). Aquaculture. Vol. 218, pp: 695-701.
8
Halver, J.E. and Hardy, R., 2002. Fish Nutrition. Third Edition. 839 p.
9
Harper, H.A.; Rodwell, V.W. and Mayes, P.A., 1979. Review of physiological chemistry. 17th Edition. Lange Medical Publications, Los Altos, USA.
10
Hien, D.V. and Doolgindachbaporn, S., 2011. Effect of Niacin and Folic Acid in Feed Rations on Growth and Live Weights of Green Catfish (Mystus nemurus Valenciennes). Pakistan Journal of Biological Sciences. Vol. 14, pp: 64-68.
11
Hughes, S.G., 1984. Effect of excess dietary Ribofelavin on growth of Rainbow trout. Journal of Nutrition. Vol. 14, pp: 1160-1663.
12
Hughes, S.G.; Rumsey, G.L. and Nickum, H.G., 1981. Riboflavin Requirement of Fingerling Rainbow Trout. Journal of American Fisheries Society. Vol. 43, pp: 167-172.
13
Jaafar, R.M.; Skov, J.; Kania, P.V. and Buchmann, K., 2011. Dose Dependent Effects of Dietary Immunostimulants on Rainbow Trout Immune Parameters and Susceptibility to the Parasite Ichthyophthirius Multifiliis. Journal of Aquaculture research and development. Vol. 3, pp: 1-8.
14
Jane, H. and Drake, V.J., 2009. Riboflavin. Micronutrient Information Center. Linus Pauling Institute at Oregon State University.
15
Esmaeili, B. and Khara, H., 2014. Growth performance, hematology and immunological parameters of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss, fed with diets containing different levels of vitamin E and folic acid. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 13, No. 4, pp: 931-943.
16
Khoshbavar-Rostami, H.A.; Soltani, M.; Kazemi, B. and Hassan, M.D., 2006b. Purification and partial characterization of serum immunoglobulins from Caspian Sea sturgeons. Bulletin European Association Fish Pathology. Vol. 26, pp: 58-62.
17
Klontz, G.W., 1994. Fish hematology. In: Techniques in fish immunology. Stolen, J.S.; Fletcher, T.C.; Rowley, A.F.; Kelikoff, T.C.; Kaatari, S.L. and Smith, S.A. (eds). Vol. 3. SOS Publications, Fair Hven, New Jersey, USA. pp: 121-132.
18
Leenhouwers, J.I.; Ter, V.M.; Verreth, J.A.J. and Schrama, J.W., 2007. Digesta characteristics and performance of African catfish (Clarias gariepinus) fed cereal grains that differ in viscosity. Aquaculture. Vol. 264, pp: 330-341.
19
McLaren, B.A.; Keller, E.; O'Donnell, D.J. and Elvehjem, C.A., 1947. The nutrition of rainbow trout. I. Studies of vitamin requirements. Archive of Biochemistry. Vol. 15, pp: 169-178.
20
Migliorini, P.; Chieregatti, G.; Trovatello, G.; Canarella, S.; Daniela, F. and Celada, F., 1985. The serum capacity to solubilize immune complexes (ICSC) measured by an enzyme-anti enzyme complex probe. Journal of Immunological Methods. Vol. 77, pp: 119-130.
21
Mohseni, M.; Poukazemi, M.; Bahmani,M.; Falahatkar, B.; Pourali, H.R. and Salehpour, M., 2006. Effects of feeing rate and frequency on growth performance of yearling great sturgeon, Huso huso. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, pp: 278-282.
22
NRC (National Research Council). 2011. Nutrient requirements of fish and shrimp, Washington, DC, USA, National Academic Press, Washington. DC. 376 P.
23
Posten, F.L.; Pedigo, R.B. and Hammond, R.B., 1976. Effects of artificial and insect defoliation on soybean net photosynthesis Journal of Economic Entomology. Vol. 69, pp: 109-112.
24
Powers, H.J., 2003. Riboflavin (vitamin B-2) and health. American Journal of Clinical Nutrition. Vol. 77, No. 6, pp: 1352-1360.
25
Shafaeipour, A.; Gorjipour, E.; Kamayi, K. and Falahatkar, B., 2011. Effects of Different Levels of Folic Acid and Vitamin C on Rainbow Trout, Oncorhynchus mykiss. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 42, pp: 281- 286.
26
Sharifzadeh, S.A.; Khara, H. and Ghobadi, Sh., 2015. Effects of vitamins E and Riboflavin (B2) and combinations of them on the hematological parameters of common carp, Cyprinus carpio L., fingerlings. Archives of Polish Fisheries. Vol. 23, pp: 107-111.
27
Simmons, A., 1997. Hematology, Simmons, Butterworth- Heinemann, 507 p.
28
Vazquez, G.R. and Guerrero G.A., 2007. Characterization of blood cells and hematological parameters in Cichlasoma dimerus (Teleostei, Perciformes). Journal of Tissue and Cell. Vol. 39, pp: 151-160.
29
Woodward, B., 1982. Riboflavin Supplementation of Diets for Rainbow Trout. Journal of Nutrition. Vol. 112, No. 5, pp: 908-913.
30
Takahashi, M.; Takahashi, S.; Brade, V. and Nussenzweig, V., 1978. Requirements for the solubilization of immune aggregates by complement. The role of the classical pathway. Journal of Clinical Investigation. Vol. 62, 349 p.
31
ORIGINAL_ARTICLE
استفاده از زیست راکتور جلبکی به منظورکاهش بار آلودگی پساب خروجی مزارع پرورش ماهی
فیتوپلانکتون ها و جلبک ها در محیط های آبی به عنوان اولین حلقه زنجیره غذایی و تولیدکننده غذا برای سایر موجودات محسوب می شوند. این موجودات در فرآیند فتوسنتز، مواد مغذی (N و P) مورد نیاز خود را از محیط آبی دریافت می کنند. در این مطالعه میزان پالایش پساب دفعی ماهی در آب توسط ریزجلبک Chlorella vulgaris در یک دوره 18 روزه مورد بررسی قرار گرفت. پژوهش حاضر در سیستم آزمایشگاهی و بر روی پساب خروجی مزارع پرورش ماهی انجام گرفت. بدین منظور یک راکتور نیمه صنعتی با حجم 5 لیتر طراحی شد که مجهز به یک تیغه هم زن، صفحه متخلخل و یک کمپرسور می باشد. استوک جلبک مورد نیاز در محیط آزمایشگاهی کشت گردید و به تراکم مورد نظر رسید. سپس به محفظه بیوراکتور که حاوی پساب ماهی بود تزریق شد. نتایج میانگین نیترات، نیتریت،فسفات، آمونیوم، TDS، TSS و BOD به ترتیب برابر با 1/94، 2/22، 0/39، 4/11، 2/02، 1/94، 2/39 میلی گرم بر لیتر به دست آمد. هم چنین مقادیر PH وهدایت الکتریکی برابر با 7/52 و 1315 میکروموس بر سانتی متر ثبت شد. بدین ترتیب می توان گفت فیلم جلبکی به صورت کارآمدی در فضای راکتور قادر به کاهش بار آلاینده بوده است، به نحوی که در این پژوهش روند کاهشی آن در طول دوره مواجهه افزایش داشته است. از سوی دیگر در انتهای دوره مواجهه تمام پارامترها به جز فسفات تقریباً به نصف کاهش یافته است. این نتیجه بیانگر آن است که راکتور جلبکی می تواند به طور موثری بار آلی پساب مزارع ماهی را کاهش دهد.
http://www.aejournal.ir/article_99537_2b6b348e8009b474c14451caf46c3381.pdf
2019-09-23
199
204
راکتور جلبکی
مزارع ماهی
پساب
Chlorella Vulgaris
مجید
عسکری حصنی
amirqmaleki@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید باهنر، کرمان، ایران
LEAD_AUTHOR
سیدعلی اکبر
هدایتی
hedayati@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
امیر
قادرمزی
a.qadermarzi@gmail.cim
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
مجتبی
پولادی
mojtabafishery1987@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سمیه
زنگی آبادی
somayeh62@yahoo.com
5
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید باهنر، کرمان، ایران
AUTHOR
نبات
نقشبندی
nabat.naghshbandi@gmail.com
6
گروه زیست شناسی. دانشکده علوم، دانشگاه پیام نور، ارومیه، ایران
AUTHOR
Chevalier, P. and De la Noue, J., 1985. Efficiency of immobilized hyperconcentrated algae for ammonium and orthophosphate removal from wastewaters. Biotechnology Letters. Vol. 7, pp: 395-400.
1
Geetha, P.K.; Baena, S. and Green, J.C., 1994. Rubber effluent treatment in a high-rate algal pond system. In: Phang, S.M., Lee, Y.K., Borowitzka, M., Whitton, B. (eds.). Proceeding of the 1st Asia-Pacific Conference on algal Biotechnology. University of Malaya, Kuala Lumpur.
2
pp: 306-312.
3
Gonzales, L.E.; Canizares, R.O. and Baena, S., 1997. Efficiency of ammonia and phosphorus removal from a Colombian agroindustrial wastewater by the microlagae Chlorealla vulgaris and Scenedesmus dimorphus. Bioresource Technology. Vol. 60, pp: 259-262.
4
Hamoda, N.F.Y. and Wong, Y.S., 1989. Wastewater nutrient removal by Chlorella pyrenoidosa & Scenedesmus sp. Environmental Pollution. Vol. 58, pp: 19-34.
5
Kızılkaya, B.; Türker, G.; Akgül, R. and Doğan, F., 2012. Comparative Study of Biosorption of Heavy Metals UsingLiving Green Algae Scenedesmus quadricauda andNeochloris pseudoalveolaris: Equilibrium and Kinetics.Journal of Dispersion Science and Technology. Vol. 33,
6
No. 3, pp: 410-419.
7
Martin, C.; De la Noun, J. and Picard, G., 1985. Intensive cultivation of freshwater microalgae on aerated pig manure. New Biotechnology. Vol. 7, pp: 245-259.
8
Martinez, M.E.; Yang, J. and Correa, G., 2000. Nitrogen and phosphorus removal from urban wastewater by the microalgae Scenedesmus obliqus. Bioresoure Technology. Vol, 73, pp: 263-272.
9
Naylor, R.; Goldberg, R.; Mooney, H.; Beveridge, M.; Clay, J.; Folke, C.; Kautsky, N.; Hubchenco, J.; Primavera, J. and Williams, M., 1998. Natures subside to shrimp and salmon farming. Science. Vol. 283, 883-884.
10
Sreesai, S. and Pakpain, P., 2007. Nutrient recycling by Chlorella vulgaris from septage effluent of the Bangkok city, Thailand. Science Asia. Vol. 33, pp: 293-299.
11
Tam, N.F.Y. and Wong, Y.S., 1989. Wastewater nutrient removal by Chlorella pyrenoidosa and Scenedesmus sp. Enviromental Pollution. Vol. 58, pp: 19-34
12
Terry, P.A. and Stone, W., 2002.Biosorption of cadmium and copper contaminated water by Scenedesmus abundans. Chemosphere. Vol. 47, pp: 249-255.
13
Voltolina, D.; Gmez-Villa, H. and Correa, G., 2004. Biomass production and nutrient removal in semicontinuous cultures of Scenedesmus sp. (Chlorophyceae) in artificial wastewater, under a simulated day-night cycle. Vie Milieu Life and Environment. Vol. 54, pp: 21-25.
14
Yalcin, T.; Naz, M. and Turkmen, M., 2006. Utilization of different nitrogen sources by cultures of Scenedesmus acuminatus. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 6, pp: 123-127.
15
Zhang, E.; Wang, B.; Wang, Q.; Zhang, S. and Zhao, B., 2008. Ammonia–nitrogen and orthophosphate removal by immobilized Scenedesmus sp. isolated from municipal wastewater for potential use in tertiary treatment. Bioresource Technology. Vol. 99, No. 9, pp: 3787-3793.
16
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه کیفیت فیله و پروفیل اسیدهای چرب ماهیان پرواری گورامی عظیم الجثه (Osphronemus goramy) و کپور معمولی (Cyprinus carpio) پرورش یافته در استخرهای بتونی
به منظور تعیین ارزش غذایی ماهی گورامی عظیم الجثه به عنوان یک گونه خوراکی جدید و مقایسه آن با کپورمعمولی به عنوان یک گونه رایج پرورشی، بچه ماهیان گورامی عظیم الجثه و کپورمعمولی در دامنه وزنی یکسان (به ترتیب 0/27±5 و 0/17±5/02 گرم) خریداری و به استخرهای بتونی معرفی و در شرایط کشت تک گونه ای شامل 2 تیمار آزمایشی هریک با 3 تکرار با جیره تجاری ماهی کپورمعمولی به مدت یک سال پرورش یافتند. در پایان آزمایش، پروتئین خام و رطوبت لاشه در ماهی کپورمعمولی و خاکستر و چربی خام در ماهی گورامی عظیم الجثه به طور معنی داری بالاتر بود (0/05>P). مجموع اسیدهای چرب اُمگا 6 در ماهی کپورمعمولی به صورت معنی داری (0/05>P) بیش تر از ماهی گورامی عظیم الجثه مشاهده شد. مجموع اسیدهای چرب اُمگا 3، سطوح اسیدهای چرب غیراشباع بلندزنجیره و میزان EPA و DHA در دو گونه مورد سنجش فاقد اختلاف معنی دار بود (0/05<P). نسبت اسیدهای چرب اُمگا 3 به اُمگا 6 در ماهی گورامی عظیم الجثه در مقایسه با ماهی کپورمعمولی به طور معنی داری بالاتر بود (0/05>P). در مقابل نسبت اسیدهای چرب چندغیراشباع به اشباع ماهی کپورمعمولی در مقایسه با ماهی گورامی عظیم الجثه دارایسطوح مطلوب تری بوده که اختلاف مذکور به لحاظ آماری معنی دار بود (0/05>P). در مجموع، با توجه به محتوای EPA و DHA در دو گونه مورد سنجش و نیز ارتقای نسبت اُمگا 3 به اُمگا 6 در ماهی گورامی عظیم الجثه، محتملاً می توان به لحاظ ویژگی های کیفی و ارزش غذایی ماهی گورامی عظیم الجثه را در زمره ماهیان پرورشی ارزشمند قلمداد نمود.
http://www.aejournal.ir/article_95932_36baaac25a28aebbb3c55415bb04ee87.pdf
2019-09-23
205
212
ماهی گورامی عظیم الجثه
ماهی کپور معمولی
کیفیت فیله
پروفیل اسیدهای چرب
امین
فرحی
farahi2010@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
محمد
سوداگر
sudagar_m@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
سیامک
یوسفی سیاه کلرودی
siamak_yousefi1@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
AUTHOR
محمد
مازندرانی
mazandarani@gau.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
شهرام
دادگر
shdadgar@yahoo.com
5
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
سید مهدی
اجاق
mahdi_ojagh@yahoo.com
6
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
جرجانی، س.؛ قلیچی، ا. و جرجانی، ح.، 1392. مقایسه ترکیب شیمیایی و پروفایل اسیدهای چرب عضله کپور ماهیان پرورشی. نشریه پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. دوره 1، شماره 3، صفحات 85 تا 98.
1
حسین زاده صحافی، ه.؛ رجبی، ن.؛ طلوعی، م. و سبحانی، م.، 1387. شاخصهای رشد بچه ماهی نورس کپور هندی روهو (Labeo rohita) تا مرحله یک ساله در شرایط اقلیمی استان گیلان. مجله پژوهش و سازندگی. شماره 78، صفحات 167 تا 175.
2
زاده هاشم، ا. و کوهی، م.ک.، 1396. ارزیابی اسیداولئیک در پیشگیری از لیپوتوکسیسیتی ناشی از اسیدپالمیتیک در سلول های قلبی کشت شده موش های صحرایی. مجله دانشگاه علوم پزشکی ایلام. دوره 25، شماره 5، صفحات 55 تا 66.
3
شعبانپور،ب.وابراهیمی،م.،1390. مقایسه ترکیب شیمیایی و پارامترهای ارزیابی حسی بین ماهی گورامی عظیم الجثه (Osphronemus goramy)، قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) و کپورمعمولی پرورشی (Cyprinus carpio). نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 64، شماره ۳، صفحات 201 تا 216.
4
ضیائیان نوربخش، ه.، 1391. تعیین پروفیل اسیدهای چرب و ترکیبات غذایی موجود در گوشت ماهی شوریده (Otolithes ruber). مجله علوم غذایی و تغذیه. سال 9، شماره 4، صفحات 77 تا 84.
5
موسوی ندوشن، ر. و عباسی، ف.، 1397. پروفایل اسیدهای چرب در برخی ماهیان پرمصرف سواحل جنوبی کشور. مجله علمی شیلات ایران. سال 27، شماره 2، صفحات 13 تا 23.
6
نوروزی، م. و باقری توانی، م.، 1396. مقایسه پروفایل اسید چرب جنس های نر و ماده ماهی کفال طلایی (Liza aurata) در سواحل جنوبی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. سال 26، شماره 3، صفحات 33 تا 40.
7
Ackman, R.G., 1988. Concerns for utilization of marine lipids and oils. Food Technology. Vol. 42, pp: 151-155.
8
Alasalvar, C., 2002. Seafoods: quality, technology and nutraceutical application an overview. In Seafoods quality, technology and nutraceutical application. ed. Cesarettin Alasalvar and Tony Taylor, New York: Springer-Verlag Berlin Heidelberg. pp: 1-5.
9
AOAC. 1990. Official Methods of Analysis of the Association of Official Analytical Chemists. In K. Helrich (Ed.), Arlington, VA, USA: Association of Official Analytical Chemists. 226 p.
10
AOAC. 2005. Official Methods of Analysis. 18th ed. Gaithersburg, MD: Association of official analytical chemists.
11
Arthur, R.;Lorenzen,K.;Homekingkeo,P.; Sidavong, K.; Sengvilaikham, B. and Garaway, C.J., 2010. Assessing impacts of introduced aquaculture species on native fish communities: Nile tilapia and major carps in SE Asian freshwaters. Aquaculture. Vol. 299, pp: 81-88.
12
Bligh, E.G. and Dyer, W.J., 1959. A rapid method of total lipid extraction and purification. Canadian Journal of Biochemistry and Physiology. Vol. 37, pp: 911-917.
13
Bayir, A.; Haliloglu, I.; Sirkecioglu, A.N. and Aras, N.M., 2006. Fatty acid composition in some selected marine fish species living in Turkish waters. J of the Science of Food and Agriculture. Vol 86, pp: 163-168.
14
Bolduc, M.; Lamarre, S. and Rioux, P., 2002. A simple and inexpensive apparatus for measuring fish metabolism. Advance in Physiology Education. Vol. 26, pp: 129-132.
15
DeSilva, S.S.; Gunasekera, R.M. and Ingram, B.A., 2004. Performance of intensively farmed Murray cod Maccullochella peeliipeelii fed newly formulated vs. currently used commercial diets, and a comparison of filled composition of farmed and wild fish. Aquaculture Research. Vol. 35, pp: 1039-1052.
16
Folch, J.; Lees, M. and Sloane-Stanley, G.H., 1957. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animals’ tissues. Journal of Biological Chemistry. Vol. 226, pp: 497-509.
17
Gratzek, J.B., 1983. Control and therapy of fish diseases. Advances in Veterinary Science and Comparative Medicine. Vol. 27, pp: 307-311.
18
Gutierrez, L.E. and da Silva, R.C.M., 1993. Fatty acid composition of commercial fish from Piracicaba. Brazilian Sciences of Agriculture. Vol. 50, pp: 478-483.
19
Haliloglu, H.I.; Bayir, A.; Sirkecioglu, A.N.; Aras, N.M. and Atamanalp, M., 2004. Composition of fatty acid composition in some tissues of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) living in sea-water and fresh water. Food Chain. Vol. 86, pp: 55-59.
20
Higgs, D.A. and Dong, F.M., 2000. Lipids and fatty acids. In: Stickney, R.R., (ed.) Encyclopedia of Aquaculture, John Wiley & Sons, New York. pp: 476-496.
21
HMSO, UK. 1994. Nutritional aspects of cardiovascular disease (report on health and social subjects. No. 46. London: HMSO.
22
Inhamuns, A.J. and Bueno Franco, M.R., 2008. EPA and DHA quantification in two species of freshwater fish from central Amazonia. Food Chemistry. Vol. 107, pp: 587-591.
23
James, C.S., 1995. Analytical Chemistry of Foods. Blackie academic and professional press, London. pp: 90-92.
24
Jankowska,B.;Zakes,Z.;Zmijewski,T.;Szczepkowski, M. and Kowalska, A., 2007. Slaughter yield, proximate composition, and flesh colour of cultivated & wild perch. Czech J of animal science. Vol. 52, No. 8, pp: 260-267.
25
Kandemir, S. and Polat, N., 2007. Seasonal variation of total lipid and total fatty acid in muscle and liver of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) reared in derbent Dam Lake. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 7, pp: 27-31.
26
Kinsella, E.; Lokeshn, B. and Stone, R.A., 1990. Dietary n-3 polyunsaturated fatty acids and amelioration of cardiovascular disease: possible mechanisms. American J of clinical Nutrition. Vol. 52, No. 1, pp: 1-28.
27
Kolade, O.Y., 2015. Fatty acid profile investigation of blue whiting fish (Micromesistius poutassou) flesh from Agbalata market badagry, Lagos West, Nigeria. Emergent Life Sciences Research. Vol. 1, No. 2, pp: 20-25.
28
Kolakowska, A. and Kolakowski, E., 2000. XXXI Scientific Session of the Committee for Food Technology and Chemistry. PAN, Poznan. pp: 14-15.
29
Kolakowska, A.; Szczygielski, M.; Bienkiewicz, G. and Zienkowiz, L., 2000. Some of fish species as a source of n-3 polyunsatirated fatty acids. Acta Ichyhyologica Piscatoria. Vol. 30, pp: 59-70.
30
Kris-Etherton,P.M.;Harris,W.S.andApel, L.J., 2002. Fish consumption, fish oil, omega-3 fatty acids & cardio vascular disease. Circulation. Vol. 106, pp: 2747-2757.
31
Martins, M.G.; Martins, D.E.G. and Pena, R.S., 2017. Chemical composition of different muscle zones in pirarucu (Arapaima gigas). Food Science & Technology. Vol. 37, No. 4, pp: 651-656.
32
Metcalfe, L.D.; Schmitz, A.A. and Pelka, J.R., 1966. Rapid preparation of fatty acids esters from lipids for gas chromatographic analysis. Annals of Chemistry. Vol. 38, pp: 524-535.
33
Millar, J.A. and Wall-Manning, H.J., 1992. Fish Oil in Treatment of Hypertension. The New Zealand Medical Journal. Vol. 105, pp: 155-163.
34
Moreira, A.B.; Visentainer, J.V.; Souza, N.E. and Matsushita, M., 2001. Fatty acids profile and cholesterol contents of three Brazilian Brycon freshwater fishes. Journal of Food Composition and Analysis. Vol. 14, No. 6, pp: 565-574.
35
Mukhopadhyay, T. and Ghosh, S., 2007. Lipid profile and fatty acid composition of two silurid fish eggs. Journal of oleo sciences. Vol. 56, No. 8, pp: 399-403.
36
Nolan, C.J. and Larter, C.Z., 2009. Lipotoxicity why do saturated fatty acids cause and monounsaturates protect against it? Journal of Gastroenterology and Hepatology. Vol. 24, pp: 830-840.
37
OZ, M. and Dikel, S., 2015. Comparison of body compositions and fatty acid profiles of farmed and wild rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Food Science and Technology. Vol. 3, No. 4, pp: 56-60.
38
Ozogul, Y.; Ozogul, F. and Alagoz, S., 2007. Fatty acid profiles & fat contents of commercially important seawater & freshwater fish species of Turkey: A comparative study. Food Chemistry. Vol. 103, pp: 217-223.
39
Palmeri, G.; Turchini, G.M. and Silva, S.S.D., 2007. Lipid characterization and distribution in the fillet of the farmed Australian native fish, Murray cod. Food Chemistry. Vol. 102, pp: 796-807.
40
Piggot, G.M. and Tucker, B.W., 1990. Effects of Technology on Nutrition. Marcel Decker, Inc. New York, USA.
41
Rodrigues, B.L.; Carolina Vilhena da Cruz Silva Canto, A.; Pereira da Costa, M.; Alves da Silva, F.; Teixeira MaÂrsico, E. and Adam Conte-Junior, C., 2017. Fatty acid profiles of five farmed Brazilian freshwater fish species from different families. PLOS ONE. Vol. 12, No. 6, pp: 1-15.
42
Sensor, L.; Suarez, M.D.; Ruiz-Cara, T. and Garcia Gallego, M., 2007. Possible effects of harvesting seasoned and chilled storage on the fatty acid profile of the filled of farmed gilthead sea bream (Sparus aurata). Food Chemistry. Vol. 101, pp: 298-307.
43
Suzuki, H.; Tamura, M. and Wada, S., 1995. Comparison of docosahexaenoic acid with eicosapentaenoic acid on the lowering effect of endogenous plasma cholesterol in adult mice. Fisheries Sciences. Vol. 61, pp: 525-526.
44
Testi, S.; Bonaldo, A.L.; Gatta, P. and Badiani, A., 2006. Nutritional traits of dorsal and ventral fillets from three armed fish species. Food Chemistry. Vol. 98, pp: 104-111.
45
Valencia, I.; Ansorena, D. and Astiasaran, I., 2006. Nutritional and sensory properties of dry fermented sausages enriched with n-3 PUFAs. Meat Science. Vol. 72, pp: 727-733.
46
Venugopal, V., 2006. Sea food processing, adding value through quick freezing, retortable packaging cook chilling. Taylor Francis Group Press. 485 p.
47
Vlieg, P. and Body, D.R., 1988. Lipid contents and fatty-acid composition of some New- Zealand freshwater finfish and marine finfish, shellfish, and roes. New Zealand Journal of Marine and Freshwater Research. Vol. 22, pp: 151-162.
48
Vujkovic, G.; Karlovic, D.; Vujkovic, I.; Vorosbaranyic,I.andJovanovic,B.,1999. Composition of Muscle Tissue Lipids of Silver Carp and Bighead Carp. Journal of the American Oil Chemists’ Society. Vol. 76, pp: 475-480.
49
Wang, X. and Han, Y., 2017. Comparison of the proximate composition, amino acid composition and growth-related muscle gene expression in diploid and triploid rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) muscles. Journal of Elementology. Vol. 22, No. 4, pp: 1179-1191.
50
Weber, J.; Bochi, V.C.; Ribeiro, C.P.; Victorio, A.M. and Emanuelli, T., 2008. Effect of different cooking methods on the oxidation, proximate and fatty acid composition of silver catfish (Rhamdia quelen) fillets. Food Chemistry. Vol. 106, pp: 140-146.
51
Wijayanto,D.;Kurohman,F.andNugroho,R.A., 2017. Model of profit maximization of the giant gourami culture. Omni-Akuatika. Vol. 13, No. 1, pp: 54-59.
52
Wimalasena, S. and Jayasuriya, M.N.S., 1996. Nutrient analysis of some freshwater fish. J of the National Science Council of Sri Lanka. Vol. 24, No. 1, pp: 21-26.
53
Yeganeh,S.;Shabanpour,B.; Hosseini, H.; Imanpour, M.R.; Shabani, A. and Abasi, M., 2012. Assessment of seasonal variation of chemical composition and fatty acid profile of fillet in cultured common carp. Iranian Journal of Biology. Vol. 25, No. 2, pp: 287-294.
54
Zlatanos, S. and Laskaridi, K., 2007. Seasonal variation in the fatty acid composition of three Mediterraneanfish-sardine, anchovy and picarel (Spicara smaris). Food Chemistry. Vol. 103, pp: 725-728.
55
Zmijewski, T.; Kujawa, R.; Jankowska, B.; Kwiatkowska, A. and Mamcarz, A., 2006. Slaughter yield, proximate and fatty acid composition and sensory properties of rapfen with tissue of bream and pike. J of food composition and analysis. Vol. 19, pp: 176-181.
56
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه اثر روش های خشک کردن در خلاء و آون بر ویژگی های شیمیایی و زمان ماندگاری سوریمی تهیه شده از فیله ماهی کپورنقره ای (Hypophthalmichthys molitrix)
پودر تهیه شده از سوریمی، به طور معمول به صورت خشک آماده شده و به عنوان یک ماده خام برای تهیه محصولات فرآوری شده دریایی کاربرد دارد. هدف ازاین مطالعه، تولید و مقایسه ارزش غذایی و زمان ماندگاری پودر تهیه شده از سوریمی خام به دست آمده از کپور نقره ای بود که در دو تیمار تحت شرایط خلا با دمای 0/5±60 درجه سانتی گراد به مدت 5 ساعت و تیمار هوای داغ (آون) با دمای 0/5±70 درجه سانتی گراد به مدت 24 ساعت خشک شدند. پودر سوریمی در بسته بندی های معمولی به مدت 60 روز در دمای محیط نگه داری شدند. نمونه برداری و آزمایشات ارزش غذایی (شامل اندازه گیری پروتیین، چربی، رطوبت، TBA و TVB-N) در 3 تکرار با فواصل 20 روز انجام پذیرفت. آنالیز آماری SPSS از نتایج نشان داد که تیمار خشک شده با خلا، حداکثرحاوی 86/33 درصد پروتیین بوده که این میزان بیش از تیمار خشک شده با آون (77/76 درصد) بود (0/05>p) ارزیابی TVB-N در طول دوره نگه داری بیانگر آن بود که تیمار 1 آون پس از 20 روز (0/98±20/3 میلی گرم/100 گرم) و تیمار خلا پس از 40 روز (0/84±20/4 میلی گرم/100 گرم) از حد استاندارد (19/6 میلی گرم/100 گرم) عبور کردند. نتایج نشان داد که پودر سوریمی تهیه شده به کمک خلا نسبت به روش آون از کیفیت بالاتری برخوردار بوده و دارای زمان ماندگاری بالاتر (تا 40 روز) در دمای محیط می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_96037_96af2a641d43e468f2a02379c23b5b0d.pdf
2019-09-23
213
220
پودر سوریمی
خشک کردن
روش خلاء
روش آون
کپور نقره ای (Hypophthalmichthys molitrix)
سعیده
مرادی نژاد
s_moradinezhad@yahoo.com
1
گروه شیلات، واحدتالش، دانشگاه آزاداسلامی، تالش، ایران، صندوق پستی: 65143-43711
AUTHOR
سیدجواد
ابوالقاسمی
abolghasemisj@yahoo.com
2
گروه شیلات، واحدتالش، دانشگاه آزاداسلامی، تالش، ایران، صندوق پستی: 65143-43711
LEAD_AUTHOR
علی اصغر
خانی پور
aakhanipour@yahoo.com
3
پژوهشکده آبزیپروری آب های داخلی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندر انزلی، ایران
AUTHOR
آزادیان، م.؛ موسوی نسب، م.، یوسفی، ع.، ١٣٩٠. تولید سوریمی و پروتئین ایزوله ازماهی کپور نقره ای (Hypophthalmichthys molitrix) و بررسی تغییرات مؤلفه های رنگی و شیمیایی نمونه های ژل و پودر تولیدی از آن ها. مجله علمی شیلات. سال 20، شماره 3، صفحات 1 تا 10.
1
استاندارد ملی ایران شماره 10494. 1383. گوشت و فرآورده های آن، اندازه گیری میزان اسید تیوباربیوتیک. موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران. 18 صفحه.
2
استاندارد ملی ایران شماره 1028. 1383. گوشت و فرآورده های آن، اندازه گیری میزان مواد ازته فرار. موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران. 24 صفحه.
3
پروانه، و.، 1377. کنترل کیفی و آزمایشگاهی شیمی مواد غذایی. انتشارات و چاپ دانشگاه تهران. 325 صفحه.
4
جلیلی، س.ح. و همرنگ امشی، ع.، 1390. تغییرات فیزیکی، شیمیایی و کیفیت حسی سوریمی ماهی کپور نقره ای تحت دمای 18- درجه سانتی گراد. مجله علمی شیلات. سال 20، شماره 3، صفحات 33 تا 44.
5
رضوی شیرازی، ح.، 1380. تکنولوژی فرآورده های دریایی. علم فرآوری. جلد دوم، انتشارات نقش مهر. 292 صفحه.
6
Abdullah, R., 2012. Functional properties of threadfin bream surimi powder added with different dryoprotectants. UMT 11th International annual symposium on sustainability science and management. 6 p.
7
AOAC. 2005. Official Method of Analysis. Washington, DC Association of Official Analytical chemists. 771 p.
8
Bombardelli,R.A.;Syperreck,M.A.andSanches,E.A., 2005. Situação atual e perspectivas para oconsumo, processamento eagregação de valor ao pescado. Arquivos de Ciências Veteri e Zoologia da UNIPAR. Vol. 8, pp: 181-195.
9
Chin, C., 2012. Incorporation of surimi powder in wet yellow noodles and its effects on the physicochemical and sensory properties. International food resear J. Vol. 19, pp: 701-707.
10
Dallabona, B.R.; Karam, L.B. and Wagner, R., 2013. Effect of heat treatment and packaging systems on the stability of fish sausage.Revista Brasileira de Zootecnia. Vol. 42, pp: 835-843.
11
Decker, E.A.; Warner, K.; Richards, M.P. and Shahidi, F., 2005. Measuring antioxidant effectiveness in food. J Agr Food Chem. Vol. 53, pp: 4303-4310.
12
El-Sebaii, A.; Aboul-Enein, S.; Ramadan, M.R.I. and El Gohary,H.G.,2002. Empirical correlations for drying kinetics of some fruits and vegetables. Energy. Vol. 27, pp: 845-859.
13
Green, D. and Lanier, T.C., 1985. Fish as the `soybean of the sea’. In Martin, R.E. and Collete, R.L., (Eds). Proceedings of the International Symposium on Engineered Seafood Including Surimi, Washington: National Fisheries Institute. pp: 42-52.
14
Guillén-Sans, R. and Guzmán-Chozas, M., 1998. The thiobarbituric acid (TBA) reaction in foods: A review. Crit Rev Food Sci Nutr. Vol. 38, pp: 315-330.
15
Halamíčková,A.andMalota,L.,2010. Muscle Thiobarbituric Acid Reactive Substance of the Atlantic Herring (Clupea harengus) in Marinades Collected in the Market Network. ACTA VET. BRNO. Vol. 79, pp: 329-333.
16
Huda, N., 2001. Functional properties of surimi powder from three Malaysian marine fish. Internationa journal food science and technology. Vol. 36, pp: 5-12.
17
Kaba, N., 2006. The Determination of Technology & Storage Period of Surimi Production from Anchovy. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences.Vol. 6, pp: 29-35.
18
Khoshkho, Zh., 2012. Protein and lipid changes of FPC produced from Caspian Sea Kilkas in VP and MAP during storage at different temperatures. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 11, pp: 9-18.
19
Kompany, E.; Benchimol, J.; Allaf, K., Ainseba, B. and Bouvier, J.M., 1993. Carrot dehydration for instant rehydration: dehydration kinetics and modeling. Drying Tech. Vol. 11, pp: 451-470.
20
MacDonald, G.A. and Lanier, T.C., 1991. The roleof carbohydrates as cryoprotectant in meats. Food Technology. Vol. 45, pp: 150-159.
21
Matsuda, Y., 1981. Protein denaturation during freeze drying of carp myofibrils. Bulletin of Japanese Society of Scientific Fisheries. Vol. 47, pp: 813-815.
22
Matsumoto, J. and Noguchi, S.F., 1992. Cryostabilization of protein in surimi. In Lanier, T.C. & Lee, C.M., (Eds). Surimi technology, New York. Marcel Dekker Inc. pp: 357-388.
23
Minozzo, M.G.; Waszczynskyj, N. and Beirao, L.H., 2004. Características fisico-quimicas do patê de tilápia do Nilo (Oreochromis niloticus) comparado a produtos similares comerciais. Alimentos & Nutrição. Vol. 15, pp: 101-105.
24
Minozzo,M.G.;Waszczynskyj,N.andBoscolo, W.R., 2008. Utilização de carne mecanicamente separada de tilapia (Oreochromis niloticus) para a produção de patês cremoso e pastoso. Alimentos e Nutrição. Vol. 19, pp: 315-319.
25
Özden, Ö. and Erkan, N., 2006. Effect of different packing methods on the shelf life of marinated rainbow trout. Archiv für Lebensmottelhygiene. Vol. 57, pp: 69-75.
26
Park, Y.H.; Chai, S.A.; Ahn, C.W. and Yang, Y.K., 1981. Changes in contents of amines in the darkfleshed fish meat during processing and storage 2: Formation of DMA and TMA in salted & dried mackerel, pike and Spanish mackerel. Bulletin of Korean Fisheries Society. Vol. 14, pp: 7-14.
27
Perumal, R., 2007. Comparative Performance of Solar Cabinet Vacuum Assisted Solar and Open Sun Drying Methods. Department of Bioresource Engineering McGill University, Montreal, Canada. 89 p.
28
Rehbein, H., 2002. Measuring the shelf-life offrozen fish. In: (Bremner, H.A. ed.), Safety & quality issues in fish processing. Woodhead Publishing Limited and CRC Press LIC. 18 p.
29
Santana, A., 2012. Technology for production of surimi powder and potential of applications. International Food Research Journal. Vol. 19, pp: 1313-1323.
30
Sawant, P.L. and Magar, N.G., 2006. Studies on Frozen Fish, Denaturation of Proteins. J of food science. Vol. 26, pp: 253-257.
31
Sheviklo, G., 2012. Characteristics of freeze-dried fish protein isolated from saithe (Pollachius virens). J Food Sci Technol. Vol. 49, pp: 309-318.
32
Silva, F.V.; Sarmento, N.L.A.F. and Vieira, J.S., 2009. Características morfométricas, rendimentosde carcaça, filé, vísceras e resíduos em tilápias-do-nilo em diferentes faixas depeso. RevistaBrasileira de Zootecni. Vol. 38, pp: 1407-1412.
33
Toyoda, K.; Kimura, I.; Fujita, T.; Noguchi, S.F. and Lee, C.M., 1992. Surimi manufacturing process. In Lanier, T.C. and Lee, C.M., (Eds). Surimi Technology, New York. Marcel Dekker Inc. pp: 79-166.
34
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی امکان رفع چسبندگی تخم به وسیله آنزیم آلکالاز، اسیدتانیک و سدیم کلراید به جای محلول کاربامید در فرآیند تکثیر مصنوعی ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio)
تخم های بسیاری از ماهیان آب شیرین بعد از فعال سازی و تماس با آب حالت چسبنده پیدا می کنند که علت آن وجود مولکول های گلیکوپروتئینی در بخش خارجی آن هاست. چسبندگی تخم ها تحت شرایط تفریخگاهی مطلوب نبوده و انباشتگی تخم های متصل به هم منجربه تلفات دراثر آنوکسی و رشد قارچ ها می شود. بنابراین یکی از مراحل تکثیرمصنوعی این قبیل ماهیان ازجمله کپورمعمولی (Cyprinus carpio)رفع چسبندگی تخم ها پیش از انکوباسیون می باشد. در این تحقیق به منظور رفع چسبندگی تخم های لقاح یافته ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) از سه ماده آنزیم آلکالاز، اسیدتانیک و سدیم کلراید استفاده شد و نتایج مربوط به درصد لقاح و نرخ تفریخ با روش متدوال کارگاه (شست و شوی تخم ها با محلول کاربامید) مقایسه شد. 9غلظت از سدیم کلراید 25، 50، 100، 250، 500، 1000، 2000، 4000 و 10000 میلی گرم در لیتر در سه زمان 15، 30 و 60 دقیقه به کار گرفته شد. 3 غلظت از اسیدتانیک 500، 1000 و 1500 میلی گرم در لیتر در سه زمان 0/5، 2 و 5 دقیقه به کار گرفته شد. هر سه غلظت در سه تکرار انجام شد. 20 دقیقه پس از فعالسازی 50 میلیلیتر آنزیم با غلظت 2 میلی لیتر بر لیتر اضافه شده و در زمان های 45، 60، 75 و 90 ثانیه در معرض قرار گرفتند. در نهایت 4 بار با آب هچری شستشو داده شده و به انکوباسیون انتقال داده شدند. نتایج در مورد رفع چسبندگی تخم ها به وسیله تیمار اسیدتانیک نشان داد که بهترین درصد لقاح (99/57) و نرخ تفریخ (99/46) مربوط به غلظت 500 میلی گرم در لیتر در مدت زمان 0/5 دقیقه بود. در مورد رفع چسبندگی تخم ها به وسیله تیمار سدیم کلراید نشان داد که بهترین درصد لقاح (87/1) و نرخ تفریخ (86/28) مرتبط به غلظت 1000 میلی گرم در لیتر در مدت زمان 30 دقیقه بود. بیش ترین درصد لقاح (97/52) و تفریخ (96/72) با آنزیم آلکالاز مربوط به تیمار با غلظت 50 میلی گرم در لیتر در مدت زمان 45 ثانیه بود که به لحاظ آماری اختلاف معنی داری با گروه شاهد داشتند (0/05>P).
http://www.aejournal.ir/article_96873_4666475fd417722399389f7d2515a80d.pdf
2019-09-23
221
226
کپورمعمولی
رفع چسبندگی
آنزیم آلکالاز
اسیدتانیک
سدیم کلراید
نیلوفر
محمدجعفری
nm.jafari1371@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
ایمانپور
mrimanpoor53@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
پوردهقانی، ک.؛ شکرکار، م.؛ کاظمی، ر.؛ وهاب زاده، ح.؛ ضیائی، م. و جلیل پور، ج.، 1391. رفع چسبندگی تخم در تکثیر مصنوعی ماهیان خاویاری به وسیله کائولن، گچ و تالک. مجله توسعه آبزی پروری. سال 6، شماره 1، صفحات 1 تا 10.
1
کلوانی، ن.ب.؛ مجازی امیری، ب.؛ کلباسی، م. و نوری، ا.، 1391. مروری بر روش های نوین در رفع چسبندگی تخم های لقاح یافته ماهیان. مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 2، شماره2، صفحات 1 تا 18.
2
کلوانی، ن.ب.؛مجازی امیری، ب.؛ کلباسی، م. و نوری، ا.، 1392. مطالعه تطبیقی اثر آنزیم تریپسین و روش متدوال گل شویی در حذف لایه چسبنده تخم لقاح یافته تاس ماهی ایرانی. نشریه شیلات مجله منابع طبیعی ایران. صفحات 109 تا 122.
3
Al Hazza, R. and Hussein, A., 2003. Stickness elimination of Himri Barbel (Barbus luteus, Heckel) eggs. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 3, pp: 47-50.
4
Billard, R.; Cosson, G.; Perchec, G. and Linhart, O., 1995. Biology of sperm and artificial reproduction in carp. Aquaculture. Vol. 129, pp: 95-112.
5
Celada, J.D.; Carral, J.M.; Saez-Royuela, M.; Melendre, P.M. and Aguilera, A., 2004. Effects of differen antifungal treatments on artificial incubation of the astacid crayfish eggs. Aquaculture. Vol. 239. pp: 249-256.
6
Cherr, G.N. and Clark, W.H., 1984. Jelly release in the eggs of the white sturgeon (Acipenser transmontatus). An enzymatically mediated event. Journal of Experimental zoology. Vol. 230, No. 1, pp: 145-149.
7
Demska-zakes, K.; Zake, Z. and Raszuk, J., 2005. The use of tannic acid to removal adhesiveness from pikeperch eggs. Aquaculture Research. Vol. 36, pp: 1458-1464.
8
Froelich, S.L. and Engelhardt, T., 1996. Comprative effects of formalin and salt treatment on hatch rate of koi carp eggs. Porog. Fish-Cult. Vol. 58, pp: 209-211.
9
Gela, D.; Linhart,O.; Flajshans, M. and Rodina, M., 2003. Egg incubation time and hatching success in tench Tinca tinca related to the procedure of egg stickiness elimination. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 19, pp: 132-133.
10
Geldhauser, F., 1995. Some aspects of embryonic and larvae development of tench (Tinca tinca). Polskie Archiwum Hydrobiologii. Vol. 42, pp: 1-2.
11
Lahnsteiner, F., 2000. Morphological, Physiological and biochemical parameters characterizing the over ripening of rainbow trout eggs. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 23, pp: 107-118.
12
Linhart, O.; Gela, D.; Flajshans, M.; Duda, P.; Rodina, M. and Novak, V., 2000. Alcalase enzyme treatment for elimination of egg stickness in tench (Tinca tinca). Aquaculture. Vol. 191, pp: 303-308.
13
Linhart, O.; Stech, L.; Svarc, J.; Rodina, M.; Audebert, J.P.; Grecu, J. and Billard, R., 2002. The culture of the European catfish (Silurus glanis) in Czech Republic and in France. Aquatic Living Resources. Vol. 15, pp: 139-144.
14
Linhart, O.; Rodina, M.; Gela, D.; Kocour, M. and Rodriguez, M., 2003. Improvement of common carp artificial reproduction using enzyme for elimination of egg stickness. Aquatic Living Resources. Vol. 16, pp: 450-456.
15
Linhart, O.; Gela, D.; Rodina, M. and Kocour, M., 2004. Optimization of artificial propagation in European catfish, Silurus glanis. Aquaculture. Vol. 235, pp: 619-632.
16
Phelps, R.P. and Walser, C.A., 1993. Effects of sea salt on the hatching of channel catfish eggs. J. Aquat. Anim. Health Vol. 5, pp: 205-207.
17
Rasowo, J.; Elijah Okoth, O. and Chege Ngugi, C., 2007. Effects of formaldehydeT sodium chloride, potassium permanganate and hydrogen peroxide on hatch rate of African catfish. Aquaculture. Vol. 269, pp: 271-277.
18
Riehl, R. and Patzner, R.A., 1998. Minereview: The modes of egg attachment in teleost fishes. Italian Journal of Zoology. Vol. 65, No. 1, pp: 415-420.
19
Schnick, R.A.; Meyer, F.P. and Gray, D.L., 1989. A guide to approved chemicals in fish and fishery resource management. University of Arkansas Cooperative Exention Service, Little Rock. AR. 22 p.
20
ORIGINAL_ARTICLE
ﺗﺄﺛﻴﺮ ﺳﻄﻮح مختلف ملاس چغندر جیره غذایی بر شاخص های خونی ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio)
استفاده از مواد طبیعی و گیاهی به عنوان افزودنی در جیره غذایی ماهی منجر به افزایش سلامت میزبان می شود. مطالعه حاضر به منظور ارزیابی اثرات افزودن ملاس چغندر قند به جیره غذایی ماهی کپور جهت بررسی برخی شاخص های خونی انجام شد. در این آزمایش از 360 قطعه ماهی کپورمعمولی با میانگین وزنی 2/5±22 استفاده شد. پس از یک هفته آداپتاسیون، در یک دوره به مدت 8 هفته غذادهی انجام شد. آزمایش در قالب 4 تیمار و هر تیمار با 3 تکرار شامل: جیره فاقد ملاس (تیمار 1)، جیره حاوی 0/5 درصد ملاس (تیمار 2)، جیره حاوی 1 درصد ملاس (تیمار 3) و جیره حاوی 2 درصد ملاس (تیمار 4) انجام شد. ماهی ها روزانه به میزان 3 درصد وزن بدن و دو بار در روز با جیره های آزمایشی تغذیه شدند. غذای گروه شاهد، غذای تجاری کپورمعمولی شرکت فرادانه بدون ملاس بود. نتایج نشان داد که مقادیر گلبول قرمز در تیمار 2% ملاس افزایش معنی داری داشته است. هم چنین بیش ترین میزان هموگلوبین در تیمار 2% ملاس دیده شد (0/05>P). هم چنین مقدار MCHC نیز در تیمار 2% ملاس افزایش پیدا کرد. بعد از شمارش افتراقی گلبول های سفید اختلاف معنی داری در بین تیمارها مشاهده نشد. به طورکلی جیره غذایی حاوی ملاس برشاخص های خونی ماهی کپورمعمولی تاثیرگذار بود و باعث افزایش تعداد گلبول قرمز و افزایش هموگلوبین در تیمار 2% ملاس شد.
http://www.aejournal.ir/article_96882_ac7f4e846078e9fc9dcbe55e7eda2eaf.pdf
2019-09-23
227
230
ملاس چغندر
شاخص های خونی
کپور معمولی (Cyprinus carpio)
مصطفی
بیگی
beygimostafa392@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
عبدالمجید
حاجی مرادلو
ahajimoradloo@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
حسین
حسینی فر
hoessein.hoseinifar@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
علی
جافرنوده
a.jafar55@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
ﺟﻤﻴﻠﻲ، ش.؛ ﻣﺎﺷﻴﻨﭽﻴﺎن ﻣﺮادی، ع.؛ ﺑﻬﻤﻨﻲ، م. و ﻛﻴﺎﺋﻲ ﺿﻴﺎﺑﺮی، ک.، 1378. بررﺳﻲ و ﺷﻨﺎﺧﺖ ﻓﺎﻛﺘﻮرﻫﺎی ﺧﻮﻧﻲ اردک ﻣﺎﻫﻲ ﺗﺎﻻب اﻧﺰﻟﻲ. اولین کنفرانس ملی علوم شیلات و آبزیان ایران. لاهیجان. صفحات 37 تا 39.
1
ﮔﺎﻟﻮوﻳﻨﺎ، آ. و ﺗﺮوﻣﺒﻴﺘﺴﻜﻲ، پ.، 1989. ﻫﻤﺎﺗﻮﻟﻮژی ﻣﺎﻫﻴﺎن اﺳﺘﺨﺮی اﻳﺴﺘﮕﺎه ﺗﺤﻘﻴﻘﺎﺗﻲ ﻋﻠﻤﻲ و اﻗﺘﺼﺎدی ﻣﺎﻫﻴﺎن ﺟﻮان. ترجمه ﻛﻴﺸﻴﻨﻴﻮ، ی. و مولداوی، م.، 156 صفحه.
2
Adel, A.; Abedian Amiri, A.; Zorriehzahra, J.; Nematolahi, A. and Angeles Esteban, M., 2015. Effects of dietary peppermint on growth performance, chemical body composition and hematological and immune parameters of fry Caspian white fish (Rutilus frisii kutum). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 45, No. 2, pp: 841-847.
3
Affonso, E.G.; Polez, V.L.P.; Correa, C.F.; Mazoa, A.F.; Araujo, M.R.R. and Moraes, G., 2002. Blood parameters and metabolites in teleost fish Colossoma macropomum exposed to sulfide or hypoxia. Comp. Biochem. Physiol. Vol. 33, pp: 375-382.
4
Bairwa, M.K.; Jakhar, J.K.; Satyanarayana, Y. and Reddy, A.D., 2012. Animal and plant originated immunostimulants used in aquaculture. Journal of Natural Products and Plant Resources. Vol. 2, pp: 397-400.
5
Bullis, R.A., 1993. Clinical pathology of temperate freshwater and estuarine fishes in: Fish Medicine. Stoskopf. pp: 232-239.
6
Dugenci, S.K.; Arda, N. and Candan, A., 2003. Some medicinal plants as immunostimulant for fish. Journal of Ethnopharmacology. Vol. 88, pp: 99-106.
7
FIGIS (Fisheries Global Information System). 2016. FAO FIGIS, Web site. FI Institutional Websites. In: FAO Fisheries and Aquaculture Department [online]. Rome. (available at: www.fao.org/fishery/figis/en).
8
Harikrishnan, R.; Nisha, M.R. and Balasundaram, C., 2003. Hematological and biochemical parameters in common carp, Cyprinus carpio, following herbal treatment for Aeromonas hydrophilainfection. Aquaculture. Vol. 221, pp: 41-50.
9
Jain, J. and Wu, Z., 2004. Influences of traditional Chinese medicine on non-specific immunity of Jian Carp. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 16, pp: 185-191.
10
Mahdavi, M.; Hajimoradloo, A. and Ghorbani, R., 2013. Effect of Aloe vera extract on growth parameters of common carp. World Journal of Medical Sciences. Vol. 9, pp: 55-60.
11
Nya, E.J. and Austin, B., 2009. Use of dietary ginger, Roscoe, as an immunostimulant to control Aeromonas hydrophilla infections in rainbow trout, (Oncorhynchus mykiss). Journal of Fish Diseases. Vol. 32, pp: 971-977.
12
Raa, J., 1996. The use of immuno-stimulatory substances in fish and shellfish farming. Reviews in Fisheries Science. Vol. 4, No. 3, pp: 229-288.
13
Reilly, A. and Keferstein, F., 1997. Food safety hazards and the application of the principles of the hazard analysis and critical control point for their control in Aquaculture production. Aquaculture Research. Vol. 28, pp: 735-752.
14
Ross, L.G. and Ross, B., 1999. Anasthetic and sedative techniques for aquatic animals. 2nd edn. Blackwell Science, Oxford, UK. Vol. 22, 57 p.
15
Shirali, S.; Erfani Majd, N.; Mesbah, M. and Reza Seifi, M., 2012. Histological studies of common Carp ovarian development during breeding season in Khouzestan Province, Iran. World J of Fish and Marine Sciences. Vol. 4, pp: 159-164.
16
Sivaram, V.; Babu, M.M.; Immanuel, G.; Murugadass, S.; Citarasu, T. and Marian, M.P., 2004. Growth and immune response of juvenile greasy groupers fed with herbal antibacterial active principle supplemented diets against Vibrio harveyi infections. Aquaculture. Vol. 237, pp: 9-20.
17
Stoskopf, M.K., 1993. Fish medicine. Saunders company. 882 P.
18
Sakai, M., 1999. Current research status of fish immunostimulants. Aquaculture. Vol. 172, pp: 63-92.
19
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی مقایسه نانوسیل (پراکسید هیدروژن با یون نقره) و مالاشیت گرین در کنترل آلودگی قارچی تخم ماهیان قره برون (Acipenser persicus) و ازون برون (Acipenser stellatus)
این تحقیق به منظور بررسی کارایی نانوسیل با مالاشیت گرین جهت کنترلآلودگی های قارچی تخم تاس ماهی ایرانی و ازون برون ارزیابی شد. تیمارنانوسیل با غلظت های 40،80،100 میلی گرم در لیتر،تیمار مالاشیت گرین با غلظت ppm 2 و تیمار شاهد هر کدام با سه تکرار در انکوباتورهای یوشچنکو به مدت سه روز جهت مقایسه و کنترل آلودگی قارچی و تعیین بهترین غلظت در تیمارهای مختلف روی تخم ماهیان قره برون و ازون برون در مرکز تکثیر و بازسازی ذخایر ماهیان خاویاری شهیدبهشتی سدسنگر از ماه های فروردین تا خرداد سال 1394 مورد ارزیابی قرار گرفت. ابتدا مولدین بالغ انتخاب شده و پس از عملیات لقاح، تعداد کل تخم کشت شده، درصد لقاح، درصد تخم های قارچ زده، سالم و ناسالم، تخم های لقاح یافته، تعداد کل لارو استحصالی و درصد هچ محاسبه گردید. نتایج مقایسه تیمارهای مختلف در قره برون نشان داد که کم ترین درصد تخم های لقاح نیافته، بیش ترین درصد تخم های سالم، کم ترین درصد تخم های قارچ زده و بیش ترین درصد تفریخ مربوط به تیمار نانوسیل 80 میلی گرم در لیتر می باشد (0/05>P).هم چنین نتایج مقایسه تیمارهای مختلف در ازون برون نشان داد که کم ترین درصد تخم های لقاح نیافته، کم ترین درصد تخم های قارچ زده و بیـش ترین درصد تفریخ مربوط به تیمار نانوسیل 80 میلی گرم در لیتر می باشد (0/05>P). در یک نتیجه گیری کلی می توان گفت که داروی نانوسیل با غلظت 80 میلی گرم در لیتر اثر موثرتری در درصد تفریخ و ضدعفونی تخم ماهیان خاویاری دارد. لذا با توجه به مضرات مالاشیت گرین پیشنهاد می گردد از نانوسیل به عنوان ماده ضدعفونی کننده جدید استفاده گردد.
http://www.aejournal.ir/article_96956_2062b4a61a9d56f54e79b0ccc851744a.pdf
2019-09-23
231
238
تاس ماهی ایرانی
ازون برون
نانوسیل
مالاشیت گرین
سیدمحمد
شفیع زاده
1
گروه شیلات، پردیس علوم و تحقیقات گیلان، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران، صندوق پستی: 3516-41335
AUTHOR
حسین
خارا
h.khara1974@yahoo.com
2
گروه شیلات، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران، صندوق پستی: 1616
LEAD_AUTHOR
علیرضا
شناور ماسوله
shenavar1969@gmail.com
3
موسسه تحقیقات بین المللی تاسماهیان دریای خزر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران، صندوق پستی: 3464-41635
AUTHOR
ابطحی، ب.؛ نظری، ر.م.؛ رسولی، ع. و شفیع زاده سماکوش، پ.، 1384. مقایسه شاخص درمانی داروهای ضدقارچی فرمالین، سبز مالاشیت و پرمنگنات پتاسیم در تاسماهی ایرانی. مجله پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. شماره 67، صفحات 42 تا 49.
1
آذری تاکامی، ق. و کهنه شهری، م.، 1353. تکثیر مصنوعی و پرورش ماهیان خاویاری. انتشارات دانشگاه تهران. 298 صفحه.
2
آذری تاکامی، ق.، 1386. گزارش نهایی پروژه معرفی ماده ضد عفونی کننده جایگزین مالاشیت گرین در مزارع تکثیر ماهیان سردآبی. 30 صفحه.
3
آذری تاکامی، ق.، 1388. تکثیر و پرورش تاسماهیان (ماهیان خاویاری). انتشارات دانشگاه تهران. چاپ دوم. 406 صفحه.
4
بنوره، ا.، 1386. اثرات پراکسید هیدروژن بر عفونت های قارچی، درصد تخم گشایی و ناهنجاری های قزل آلای رنگین کمان. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه تربیت مدرس. 45 صفحه.
5
عبدلی، ا. و نادری، م.، 1387. تنوع زیستی ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر. تهران. انتشارات علمی آبزیان. 242 صفحه.
6
غلام قاسمی،م.،1388. بررسی مقایسه ای داروهای ضدقارچ فرمالین، مالاشیت گرین و نانوسیل در تیمار تخم ماهـی آزاد دریـای خـزر (Salmo trutta caspius). پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان. صفحات 5 تا 30.
7
قزوینی، ا.؛ وهاب زاده رودسری، ح.؛ چمن آرا، و.؛ آذری تاکامی، ق. و شناورماسوله، ع.ر.، 1392. مقایسه نانوسید، پراکسید هیدروژن و کلرامینT در کاهش فلور قارچی لارو تاسماهی ایرانی (Acipenserpersicus). مجله شیلات. سال 7، شماره 1، صفحات 13 تا 20.
8
کهیش اسفندیاری، م.؛ سلطانی، م. و سجادی، م.م.، 1389. اثرات ضدقارچی تراف نانوسیلور روی تخم ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) و لارو تا وزن یک گرمی. مجله آبزیان و شیلات. سال 1، شماره 2، صفحات 63 تا 74.
9
نوری، م.، 1389. مقایسه اثر ضدقارچی نانوسیل و پراکسید هیدروژن بر تخم های لقاح یافته ماهی کپورمعمولی. پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات. دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان. 75 صفحه.
10
وهاب زاده، ح.؛ احمدی، م.؛ کیوان، ا.؛ معصومیان، م. و منجمی، ب.، 1381. مقایسه کارایی پراکسیدهیدروژن و مالاشیتگرین در مقابله با قارچ های آبی در تکثیر مصنوعی کپورمعمولی (Cyprinus carpio). مجله علوم و فنون دریایی ایران. دوره 2، شماره 1، صفحات 77 تا 85.
11
وهاب زاده،ح.، 1382. ارزیابی کارایی پراکسیدهیدروژن و لوامیزول هیدروکلراید در تیمار تخم ها و نوزاد تاسماهی ایرانی و کپور ماهیان چینی. رساله دکترا. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران. 107 صفحه.
12
Dawson, V.K.; Rach, J.J. and Schreier, T.M., 1994. Hydrogen peroxide as a fungicide for fish culture. Bulletion of the Aquaculture Association of Canada. Vol. 94, No. 2, pp: 54-56.
13
Dettlaff, T.A.; Ginsburg, A.S. and Schmalhausen, O.I., 1993. Sturgeon fishes. Translated by Gause, G.G. and Vassetzky, S.G. Springer-Verlag Berlin Heidelberg. 300 P.
14
Durborow, R.M.; Wise, D.J. and Terhune, J.S., 2003. Saprolegniasis (Winter Fungus) and Branchiomycosis of commercially Cultured Channel Catfish. SRAC Publication. 4700 P.
15
Edgell, P.; Lawseth, D.; Mclean, W.E. and Britton, E.W., 1993. The use of salt solution to control fungus (Saprolegnia) infestation on salmon eggs. The Progressive Fish-Culturist. Vol. 55, pp: 48-52.
16
Farmen, E.; Mikkelsen, H.N.; Evensen, O.; Einset, J.; Heier, L.S.; Rosseland, B.O.;Salbu, B.; Tollefsen, K.E. and Oughton, D.H., 2012. Acute and sub-lethal effects in juvenile Atlantic salmon exposed to low μg/L concentrations of Ag nanoparticles. Aquat. Toxicol. Vol. 108, pp: 78-84.
17
Hanjavanit, C.; Kitancharoen, N. and Rakmanee, C., 2008. Experimental Infection of Aqauatic Fungi on Eggs of African Catfish (clariass gariepinus). KKU Science Journal. Vol. 36, pp: 36-43.
18
Kitancharoen, N.; Yamamoto, A. and Hatai, K., 1998. Effect of Sodium Chlorid, Hydrogen peroxide and Malachit green on fungal infection in Rainbow trout eegs. Biocontrol Science. Vol. 3, No. 2, pp: 113-115.
19
Moghim, M., 2013. Isolation, characterization and application of micro-satellite markers in Persian sturgeon, Acipenser persicus. Ph.D. Thesis. University Putra Malaysia. 277 P.
20
Montgomery-Brock, D.; Sylvester, J.Y.; Tamaru, C.T. and Brock, J., 2000. Hydrogen peroxide treatment for Amyloodinium sp. on Mullet (Mugil cephalus) fry. The oceanic institute and the university of Hawaii. Vol. 11, No. 4, pp: 4-6.
21
Neish, G.A., 1977. Observations on Saprolegniasis of adult Sockeye salmon, oncorhynchus nerka (walbaum). Journal of Fish Biology. Vol. 10, No. 4, pp: 513-522.
22
Rach, J.J.; How, G.E. and Schreier, T.M., 1997. Safety of formalin treatments on warm and coolwater fish eggs. Aquaculture. Vol. 149, pp: 183-191.
23
Rach, J.J.; Schreier, T.M.; Howe, G.E. and Redman, S.D., 1997. Effect of Species, life Stage, and water Temperature on the Toxicity of Hydrogen peroxide to Fish. The Progressive Fish-Culturist. Vol. 59, pp: 41-46.
24
Rach, J.J.; Valentine, J.J.; Schreier, T.M.; Gaikowski, M.P. and Crawford, T.G. 2004. Efficacy of hedrogen peroxide to control Saprolegniasis on channel catfish (Ichtalurus Punctatus) eggs. Aquaculture. Vol. 238, pp: 135-142.
25
Robarts, J.R., 2011. Fish pathology. Third edition. Sunders: UK. pp: 380-412.
26
Saez, J.A. and Bowser, P.R., 2001. Hydrogen Peroxide Concentration in Hatchery Culture Units and Effluent During and after treatment. North American Journal of Aquaculture. Vol. 63, pp: 74-78.
27
Saygi, Y., 2003. EffectS of Hydrogen Peroxide, Cold Storage and Decapsulation on the Hatching Success of Artemia Cysts. The Israeli Journal of Aquaculture Bamigdeh. Vol. 55, No. 2, pp: 107-113.
28
Shahbazian, N.; Ebrahimzadeh Mousavi, H.A.; Soltani, M.; Khosravi, A.R.; Mirzargar, S.S. and Sharifpour, I., 2010. Fungal contamination in rainbow trout eggs in Kermanshah province propagations with emphasis on Saprolegniaceae. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 9, No. 1, pp: 151-160.
29
Shahbazzadeh, D.; Ahar, H.; Mohammad Rahimi, N.; Dastmalchi, F.; Soltani, M.; Rahmannya, J.; Khorasani, N. and Fotovat, M. 2009. The effects of Nanosilver (Nanocid) on Survival percentage of Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss). Pakistan Journal of Nutrition. Vol. 8, No. 8, pp: 1178-1179.
30
Tort, M.J.; Jennings-Bashore, C.; Wilson, D.; Wooster, G.A. and Bowser, P.R., 2002. Assessing the Effect of Increasing Hydrogen Peroxide Dosage on Rainbow Trout Gill Utilizing a Digitized Scoring Methodology. Journal of Aquatic Animal Health. Vol. 14, pp: 95-103.
31
Vanwest, P., 2006. Saproleegnia Parasitica, an Oomycete Pathogen with a fishy appetite: New challenges for an old problem. Mycologist. Vol. 20, pp: 99-104.
32
Woo, P.T.K. and Bruno, D.W., 2011. Fish diseases and disorders. In: viral, bacterial and fungal infections. CAB international publication. 930 P.
33
ORIGINAL_ARTICLE
اثر سطوح مختلف ویتامین B12 در پرورش توام ماهی تیلاپیای نیل (Oreochromis niloticus) و گیاه زعفران (Crocus sativus) و بررسی تاثیر آن بر عملکرد گیاه و شاخص های رشد و بیوشیمیایی خون ماهی
به منظور بررسی اثر افزودن سطوح مختلف ویتامین B12 به آب در یک سازگان توام ماهی تیلاپیای نیل (Oreochromis niloticus) و گیاه زعفران (Crocus sativus)، تعداد 240 قطعه ماهی تیلاپیای نیل 1/5±12/5 گرمی و 120 عدد پیاز گیاه زعفران به شکل کاملاً تصادفی به 12 واحد آزمایشی وارد شدند و تحت تاثیر تیمارهای هفتگی 0، 10، 20، و 30 میلی گرم ویتامین B12 در هر لیتر آب به مدت 60 روز قرار گرفتند. در پایان، شاخص های رشد ماهی از قبیل درصد افزایش وزن، نرخ رشد ویژه، نرخ تبدیل غذایی و نرخ کارایی پروتئین تغییر معنی داری در بین تیمارهای آزمایش نشان نداد (0/05≤P). وزن ریشه گیاه زعفران در تیمار 30 میلی گرم بر لیتر ویتامین به شکل معنی داری از سایر تیمارها بیش تر بود و طول برگ گیاه زعفران در تیمارهای 20 و 30 میلی گرم بر لیتر ویتامین به ترتیب کاهش معنی دار داشت. سنجش برخی شاخص های بیوشیمایی خون ماهی نیز نشان داد محتوای پروتئین کل، گلوکز و کورتیزول موجود در سرم خون ماهی در تمام تیمارها از نظر آماری برابر بود (0/05≤P). اما محتوای آنزیم آلکالین فسفاتاز و آسپارتات آمینوترانسفراز سرم خون ماهی، در تیمار 30 میلی گرم بر لیتر ویتامین از سایر تیمارها بیش تر بود (0/05≥P). نتایج بیانگر این است که افزودن 10 تا 20 میلی گرم ویتامین B12 به آب سازگان کشت توام گیاه زعفران و ماهی تیلاپیای نیل، می تواند سبب بهبود رشد و عملکرد گیاه زعفران شود.
http://www.aejournal.ir/article_97018_49a892f862ea27a6eaa44b080459ae21.pdf
2019-09-23
239
246
آکواپونیک
کوبالامین
گیاه زعفران
ویتامین ب12
ماهی آب شیرین
سینا
جوانمردی
sina.javanmardi@ut.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
کامران
رضایی توابع
krtavabe@ut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
رعنا
بهادری
rana.bahadori@ut.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
دهقان زاده، س.؛ زمینی، ع. و خارا، ح.، 1392. تاثیرات اضافه نمودن ویتامین D در جیره غذایـی بچه ماهیان قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) بر روی سیستم ایمنی و فاکتورهای خونی. فصلنامه آبزیان و شیلات. دوره 16، شماره 4، صفحات 33 تا 44.
1
رحیمی، م.؛ سوداگر، م.؛ اورجی، ح.؛ حسینی، س.ع. و تقی زاده، و.، 1391. تاثیر ویتامین C بر پارامترهای خونی، رشد و پاسخ به استرس دمایی در بچه ماهیان قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). فصلنامه تحقیقات دامپزشکی. دوره 67، شماره 4، صفحات 373 تا 380.
2
رضوانی مقدم، پ.؛ کوچکی، ع.ر.؛ فیلابی، ع. و سیدی، س.م.، 1392. اثر کودهای زیستی و شیمیایی بر عملکرد گل و بنه های دختری زعفران (Crocus sativus). مجله علوم زراعی ایران. دوره 15، شماره 3، صفحات 234 تا 246.
3
فضایی، ز.؛ سجادی، م.؛ سوری نژاد، ا. و اسدی، ر.، 1391. اثر پرورش در تراکم های مختلف و افزودن ویتامین E به جیره غذایی بر شاخص های رشد، بقاء و ترکیبات لاشه بچه ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 2، شماره 2، صفحات 44 تا 55.
4
Alkobaby, A.I., 2008. Effects of maternal injection with organic phosphorus and vitamin B12 on reproductive performance and newely hatched offspring of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). In from the pharaohs to the future. Eighth International Symposium on Tilapia in Aquaculture. Proceedings. Cairo, Egypt, Aquafish Collaborative Research Support Program. pp: 375-386.
5
Asadi, G.A.; Rezvani Moghaddam, P. and Hassanzadeh Aval, F., 2014. Effects of soil and foliar applications of nutrients on corm growth and flower yield of saffron (Crocus sativus L.) in six year- old farm. Saffron Agronomy and Technology. Vol. 2, No. 1, pp: 31-44.
6
Blidariu, F. and Grozea, A., 2011. Increasing the economical efficiency and sustainability of indoor fish farming by means of aquaponics-review. Scientific Papers Animal Science and Biotechnologies. Vol. 44, No. 2, pp: 1-8.
7
El-Rhman, A.M.A.; Khattab, Y. Aand Shalaby, A.M., 2009. Micrococcus luteus and Pseudomonas species as probiotics for promoting the growth performance and health of Nile tilapia, Oreochromis niloticus. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 27, No. 2, pp: 175-180.
8
Fenech, M., 2001. The role of folic acid and vitamin B12 in genomic stability of human cells. Mutation Research /Fundamental and Molecular Mechanisms of Mutagenesis. Vol. 475, No. 1, pp: 57-67.
9
Graham, R.M.; Deery, E. and Warren, M.J., 2009. Vitamin B12: Biosynthesis of the corrin ring. In Tetrapyrroles. Springer, New York, NY. pp: 286-299.
10
Kafi, M.; Rashed Mohasel, M.H.; Koocheki, A. and Mollafilabi, A., 2002. Saffron, Production and Processing. Zaban va Adab Press, Iran. pp: 276-278.
11
Klinger, D. and Naylor, R., 2012. Searching for solutions in aquaculture: charting a sustainable course. Annual Review of Environment and Resources. Vol. 37, pp: 247-276.
12
Koocheki, A., 2004. Indigenous knowledge in agriculture with particular reference production in Iran. Acta Horticulture. Vol. 650, pp: 175-182.
13
Koocheki, A., 2013. Research on production of Saffron in Iran: Past trend and future prospects. Saffron Agronomy and Technology. Vol. 1, No. 1, pp: 3-21.
14
Krogdahl, Å. and Marie Bakke-McKellep, A., 2005. Fasting and refeeding cause rapid changes in intestinal tissue mass and digestive enzyme capacities of Atlantic salmon (Salmo salar L.). Comparative Biochemistry and Physiology Part a Molecular and Integrative Physiology. Vol. 141, pp: 450-460.
15
Lee, Y.J. and George, E., 2005. Contributions of mycorrhizal hyohae to the uptake of metalcations by cucumber plants at two levels of phosphorous supply. Plant Soil. Vol. 278, pp: 361-370.
16
Miller, A.; Korem, M.; Almog, R. and Galboiz, Y., 2005. Vitamin B12, demyelination, remyelination and repair in multiple sclerosis. Journal of the neurological sciences. Vol. 233, No. 1-2, pp: 93-97.
17
Molina, R.; Moreno, I.; Pichardo, S.; Jos, A.; Moyano, R., Monterde, J.G. and Cameán, A., 2005. Acid and alkaline phosphatase activities and pathological changes induced in Tilapia fish (Oreochromis sp.) exposed subchronically to microcystins from toxic cyanobacterial blooms under laboratory conditions. Toxicon. Vol. 46, No. 7, pp: 725-735.
18
Nya, E.J. and Austin, B., 2011. Dietary modulation of digestive enzymes by the administration of feed trout, (Oncorhynchus mykiss) Walbaum additives to Rainbow Aquaculture Nutrition. Vol. 17, pp: 459-466.
19
Rafiee, G. and Saad, C.R., 2005. Nutrient cycle and sludge production during different stages of red tilapia (Oreochromis sp.) growth in a recirculating aquaculture system. Aquaculture. Vol. 244, No. 1-4, pp: 109-118.
20
Rakocy, J.; Shultz, R.C.; Bailey, D.S. and Thoman, E.S., 2003. Aquaponic production of tilapia and basil: comparing a batch and staggered cropping system. In South Pacific Soilless Culture Conference-SPSCC 648, pp: 63-69.
21
Roque, A.; Yildiz, H.Y.; Carazo, I. and Duncan, N., 2010. Physiological stress responses of sea bass (Dicentrarchuslabrax) to hydrogen peroxide (H2O2) exposure. Aquaculture. Vol. 304, pp: 104-107.
22
Souret, F.F. and Weathers, P.J., 2000. The growth of saffron (Crocus sativus L.) in aeroponics and hydroponics. Journal of herbs, spices and medicinal plants. Vol. 7, No. 3, pp: 25-35.
23
Sugita, H.; Miyajima, C. and Deguchi, Y., 1991. The vitamin B12-producing ability of the intestinal microflora of freshwater fish. Aquaculture. Vol. 92, pp: 267-276.
24
Suresh, A.V. and Lin, C.K., 1992. Tilapia culture in saline waters: a review. Aquaculture. Vol. 106, No. 3-4, pp: 201-226.
25
Telli, G.S.; Ranzani-Paiva, M.J.T.; de Carla Dias, D.; Sussel, F.R.; Ishikawa, C.M. and Tachibana, L., 2014. Dietary administration of Bacillus subtilis on hematology and non-specific immunity of Nile tilapia Oreochromis niloticus raised at different stocking densities. Fish and shellfish immunology. Vol. 39, No. 2, pp: 305-311.
26
Wang, M. and Lu, M., 2016. Tilapia polyculture: a global review. Aquaculture Research. Vol. 47, No. 8, pp: 2363-2374.
27
Yamada, K., 2013. Cobalt: its role in health and disease. In Interrelations between Essential Metal Ions and Human Diseases. Springer, Dordrecht. pp: 295-320.
28
Zou, Y.; Hu, Z.; Zhang, J.; Xie, H.; Liang, S., Wang, J. and Yan, R., 2016. Attempts to improve nitrogen utilization efficiency of aquaponics through nitrifies addition and filler gradation. Environmental Science and Pollution Research. Vol. 23, No. 7, pp: 6671-6679.
29
Zuo, Y. and Zhang, F., 2011. Soil and crop management strategies to prevent iron deficiency in crops. Plant and Soil. Vol. 339, pp: 83-93.
30
ORIGINAL_ARTICLE
چک لیست گونه های مورچه در زیستگاه های مختلف مرکز ایران
تحقیق حاضر به فون مورچه ها در زیستگاه های مختلف نواحی مرکزی ایران طی سال های 1395 و 1396 پرداخته است. بر این اساس 20 ایستگاه از 4 زیستگاه بیابانی، کوهپایه ای، دشت و روستایی و شهری تعیین و نمونه برداری از آن ها طی 3 فصل بهار، تابستان و پاییز به روش تله گذاری (Pitfall) و یا مستقیم در ساعات منظم انجام گرفت. در مجموع تعداد 314 نمونه از تمامی ایستگاه ها جمع آوری گردید که از این تعداد، 32 گونه از 13 جنس و 9 قبیله متعلق به 3 زیرخانواده Myrmicinae، Formicinae و Dolichoderinae به شرح زیر شناسایی شد: Subfamily: Myrmicinae Tribe: Stenammini Genus: Messor Species: M. mediorubra M. ebeninus M. minor M. galla M. rufotestaceus Messor sp. Tribe: Solenopsidini Genus: Monomorium Species: M. indicum M. pharaonis M. kusnezowi M. subopacum Tribe: Attini Genus: Pheidole Species: P. teneriffana P. megacephala P. pallidula Tribe: Crematogastrini Genus: Tetramorium Species: T. moravicum T. sp. Genus: Crematogaster Species: C. oasium Genus: Cardiocondyla Species: C. ulianini C. stambuloffiSubfamily: Formicinae Tribe: Formicini Genus: Cataglyphis Species: C. niger C. bellicosus C. setipes C. altisquamis C. lividus C. frigidus Tribe: Plagiolepidini Genus: Lepisiota Species: L. dolabellae L. bipartite Genus: Paratrechina Species: P. longicornis Genus: Plagiolepis Species: P. abyssinica Tribe: Camponotini Genus: Camponotus Species: C.(Tanaemyrmex) xerxes C. kurdistanicus Tribe: Lasiini Genus: Lasius Species: L. alienusSubfamily: Dolichoderinae Tribe: Tapinomini Genus: Tapinoma Species: Tapinoma simrothi تمامی گونه ها مورد تائید نهایی پروفسور برایان تیلور عضو انجمن حشره شناسان سلطنتی انگلستان قرار گرفته است.
http://www.aejournal.ir/article_100558_1087fd8e17a57ef706cf5763dbcdca1f.pdf
2019-09-23
247
256
جانوران
Hymenoptera
Formicidae
حشرات
مورچه
محمدرضا
محسنی
mrmohseni1992@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
شاهرخ
پاشایی راد
sp2191@gmail.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم و فناوری های زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
نسیم
حیاتی رودباری
nasimhayatinasimhayati@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
اداره کل هواشناسی استان قم. 1396. بررسی شرایط آب و هوایی نواحی مرکزی ایران.
1
آرام، ا.، 1393. بررسی فونستیک و فراوانی مورچه های خانواده Formicidae در استان اردبیل شهرستان خلخال خورشه. گرایش بیوسیستماتیک جانوری، دانشکده زیست شناسی، دانشگاه آزاد واحد تهران پزشکی. 145 صفحه.
2
ارده، م.ج.، 1373.بررسی ویژگی های رده بندی و رفتاری مورچه های منطقه کرج. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده کشاورزی دانشگاه تهران. 108 صفحه.
3
پاک نیا، ا.؛ حجتی، و.؛ کمی، ح.ق. و گل محمدی، م.ص.، 1387. تنوع گونه های مورچه در دو منطقه استپی و بیابانی دامغان. زیست شناسی جانوری. سال 1، شماره 2، صفحات 23 تا 30.
4
ترابی، ر.،1394. بررسی فونستیک مورچه ها (Hymenoptera: Formicidae) در شهرستان شیراز و حومه. پایان نامه کارشناسی ارشد. بیوسیستماتیک جانوری، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه شهیدبهشتی. 94 صفحه.
5
حسین نژاد، س.، 1389. بررسی فونستیک و تنوع زیستی مورچه ها (Hymenoptera: Formicidae) در شهرستان زنجان و حومه. پایان نامه کارشناسی ارشد. گرایش بیوسیستماتیک جانوری، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه شهید بهشتی. 113 صفحه.
6
حیدری کیا،و.،1394. بررسی فونستیک مورچه های (Hymenoptera: Formicidae) استان قم. پایان نامه کارشناسی ارشد، بیوسیستماتیک جانوری، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه شهید بهشتی. 98 صفحه.
7
عالی پناه، ه.، 1374. بررسی سیستماتیکی مورچه های کارگر منطقه تهران. پایان نامه کارشناسی ارشد علوم جانوری، دانشکده علوم، دانشگاه تهران. 300 صفحه.
8
قاطعی کلاشمی، م.، 1394. بررسی فونستیک و تنوع زیستی مورچه ها (Hymenoptera: Formicidae) در بخش شمالی استان گیلان. پایان نامه کارشناسی ارشد، گرایش بیوسیستماتیک جانوری، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه شهید بهشتی. 90 صفحه.
9
قهاری، ح.؛ طبری، م.؛ رشیدی، ا. و محبی، ح.، 1389. بررسی فون و تغییرات جمعیت مورچه های (Hymenoptera: Formicidae) شکارگر آفات مزارع برنج مازندران. مجله دانش نوین کشاورزی. سال 6، شماره 19، صفحات 16 تا 23.
10
محسنی، م.، 1396. شناسایی و بررسی تنوع زیستی مورچه های (Hymenoptera: Formicidae) استان قم. پایان نامه کارشناسی ارشد، گرایش بیوسیستماتیک جانوری، دانشکده علوم پایه، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم تحقیقات تهران. 163 صفحه.
11
نفیسی فرد،ر.، 1392. بررسی فونستیک و فراوانی مورچه ها (Hymenoptera: Formicidae) در شهرستان سبزوار و حومه. پایان نامه کارشناسی ارشد، بیوسیستماتیک جانوری، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه شهید بهشتی. 103 صفحه.
12
Agosti, D. and Johnson, N.F., 2003. La nueva taxonomía de hormigas. Fernández, F. Introducción a las hormigas de la región neotropical. Smithsonian Institution Press: Capítulo 6 y Anexo 1. 2003. Impreso en Bogotá, Colombia. Noviembre de 2003. pp: 45-48.
13
Alipanah, H.and Dejakam, M., 2000. Introduction of Seven new species of ants (Hym., Formicidae) from Iran. presented at 14th Iranian Plant Protection Congress. 5-8 Sept. 2000, Isfahan University of Technology. Isfahan, Iran. Abstract. 349 p.
14
Belchior, C.; Sendoya, Sebastián F. and Del-Claro, K., 2016. Temporal Variation in the Abundance and Richness of Foliage-Dwelling Ants Mediated by Extrafloral Nectar. PLoS One. Vol. 11, No. 7, e0158283.
15
Bolton, B., 1994. Identification Guide to the Ant Genera of the World. Harvard University Press: Cambridge, Massachusetts, USA. 222 p.
16
Collingwood, C A., 1985. Hymenoptera: Fam. Formicidae of Saudi Arabia. Fauna of Saudi Arabia. Vol.7, pp: 230-302.
17
Collingwood,C.A. and AgostiD., 1996. Formicidae (Insecta: Hymenoptera) of Saudi Arabia (Part 2).
18
Dostál, P.; Breznová, M.; Kozlicková, V.; Herben, T. and Kovár, P., 2005. Ant-induced soil modification and its effect on plant below-ground biomass. Elsevier GmbH. All rights reserved. Pedobiologia. Vol. 49, pp: 127-137.
19
Emery, C., 1906. Rassegna critica delle specie paleartiche del genere Myrmecocystus. Memorie Reale Accademia Scienze dell'istituto di Bologna, Series VI. Vol. 3, pp: 173-187.
20
Folgarait, P.J., 1998. Ant biodiversity and its relationship to ecosystem functioning: a review. Biodiversity and Conservation. Vol. 7, No. 9, pp: 1221-1244.
21
Forel, A., 1904. Dimorphisme du mâle chez les fourmis et quelques autres notices myrmécologiques. Annales de la Société Entomologique de Belgique. Vol. 48, pp: 421-425.
22
Goulet, H. and Hubert, J.F., 1993. Hymenoptera of the world. An identification guide to families. Research Branch, Agricultural Canada Publication. Canada Communication Group Publishing, Ottawa. 668 Seiten. Preis: FF 412. ISBN 0‐660‐14933‐8.
23
Grimaldi, D. and Agosti, D., 2000. A formicine in New Jersey Cretaceous amber (Hymenoptera: Formicidae) and early evolution of the ants. PNAS. Vol. 97, No. 25, pp: 13678-13683.
24
Haddad, J.V.; Cardoso, J.L.C. and Moraes, R.H.P., 2005. Description of an injury in a human caused by a false tocandira (Dinoponera gigantea, Perty, 1833) with a revision on folkloric, pharmacological and clinical aspects of the giant ants of the genera Paraponera and Dinoponera (sub-family Ponerinae). Revista do Instituto de Medicina Tropical de São Paulo. Vol. 47, No. 4, pp: 235-238.
25
Hashimoto, Y., 2003. Identification guide to ant genera of Borneo. Inventory and Collection. Total protocol for understanding of biodiversity, Chapter: 9, Publisher: Institute for Tropical Biology and Conservation, Universiti Malaysia Sabah and Japan International Cooperation Agency (JICA), Editors: Yoshiaki Hashimoto, Homathevi Rahman. pp: 89-162.
26
Jilkova, V.; Frouz, J.; Domischc, T. and Finer L., 2010. The effect of wood ants (Formica s. str.) on soil chemical and microbiological Properties. 2010 19th World Congress of Soil Science, Soil Solutions for a Changing World. Brisbane, Australia.
27
Jilkova, V.; Chlumsky, J.; Koutecky, P. and Stech, M., 2012. Roles of species-preferential seed dispersal by ants and endozoochory in Melampyrum (Orobanchaceae). Journal of Plant Ecology. Vol. 6, No. 3, pp: 232-239.
28
Jones, A.S., 2008. Fantastic ants. Did you know? . National Geographic Magazine, Archived from the original.
29
LaPolla, J.S., 2013. Ants and the Fossil Record. Annu Rev Entomol. Vol. 58, pp: 609-630.
30
McGain, F. and Winkel, K.D., 2002. Ant sting mortality in Australia. Toxicon. Vol. 40, No. 8, pp: 1095-1100.
31
Menozzi, C., 1927. Zur Erforschung des Persischen Golfes (Beitrag nr. 12) Formicidae (Hymenoptera). SupplementaEntomologica. Vol. 16, pp: 117-119.
32
Pashaei Rad, S.; Taylor, B.; Torabi, R.; Aram, E.; Abolfathi, G.; Afshari, R.; Borjali, F.; Ghatei, M.; Hediary, F.; Jazini, F.; Heidary Kiah, V.; Mahmoudi, Z.; Safariyan, F. and Seiri, M., 2018. Further records of ants (Hymenoptera: Formicidae) from Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 64, No. 2, pp: 145-159.
33
Rabeling, C.; Brown, J.M. and Verhaagh, M., 2008. Newly discovered sister lineage sheds light on early ant evolution. PNAS. Vol. 105, No. 39, pp: 14913-14917.
34
Radchenko, A.G., 1998. A Key to Ants of the Genus Cataglyphis forester (Hymenoptera, Formicidae from Asia). Entomological Review. Vol. 78, No. 4, pp: 475-480.
35
Sanders, D. and Van Veen, F.J.F., 2011. Ecosystem engineering and predation: the multi trophic impact of two ant species. Journal of Animal Ecology. Vol. 80, pp: 569-576.
36
Schultz, T.R., 2000. In search of ant ancestors. Proceedings of the National Academy of Sciences. Vol. 97, No. 26, pp: 14028-14029.
37
Thomas, P., 2007. Pest Ants in Hawaii. Hawaiian Ecosystems at Risk project (HEAR). Retrieved 6 July 2008.
38
Ward, P.S., 2007. Phylogeny, classification, and species level taxonomy of ants (Hymenoptera: Formicidae). Zootaxa. Vol. 1668, pp: 549-563.
39
Wilson, E.O. and Hölldobler, B., 2005. The rise of the ants: A phylogenetic and ecological explanation. PNAS. Vol. 102, No. 21, pp: 7411-7414.
40
ORIGINAL_ARTICLE
کارایی کنه کش جدید انویدور اسپید (SC%24) در مقایسه با چند کنه کش متداول روی کنه قرمز اروپایی در باغ های سیب استان های آذربایجان شرقی، آذربایجان غربی و خراسان رضوی
کنه قرمز اروپایی Koch)Panonychus ulmi) از مهم ترین آفات درختان سیب در نقاط مختلف کشور است. این پژوهش در باغهای سیب استانهای آذربایجان شرقی، آذربایجان غربی و خراسان رضوی در قالب طرح بلوکهای کامل تصادفی با 7 تیمارو 4 تکرار شامل: کنه کش جدید انویدور اسپید SC 24% به نسبت 0/5 و 0/4 در هزار، کنه کش باروک SC 10% به نسبت 0/4 در هزار، کنه کش پروپارژیت EC 57% به نسبت 1 در هزار، کنه کش پراید SC 20% به نسبت 0/4 در هزار، کنه کش انویدور SC 24% به نسبت 0/5 در هزار و تیمار شاهد با آب انجام گرفت.ارزیابی با شمارش تعداد کنه های زنده در سطح برگ یک روز قبل و 3، 7، 14، 21 و 28 روز بعد از سمپاشی و تبدیل داده ها به درصد تلفات صورت گرفت. تجزیه و تحلیل آماری توسط نرم افزار SAS صورت گرفت. در فاصله زمانی 7-28 روز پس از اعمال تیمارها، هر دو غلظت کنه کش انویدور اسپید تأثیر مناسب تری نسبت به سایر کنه کش ها داشته است. دزهای مورد بررسی کنه کش انویدور اسپید از روز سوم در کنترل کنه مؤثر بودو در سه استان تحت بررسی بین 33 تا 75 درصد تلفات ایجاد کرد و روز هفتم کارایی آن تا 92 درصد رسید. در روز 28ام بعد از سمپاشی کارایی این ترکیب تا 97 درصد نیز رسید. کنه کش انویدور اسپید کارایی مطلوبی در کنترل کنه قرمز اروپایی نسبت به سایر کنه کش های مورد بررسی داشت و به کارگیری دز مصرفی 0/4 در هزار این ترکیب برای کنترل کنه قرمز اروپایی در باغات سیب توصیه می شود.
http://www.aejournal.ir/article_100560_2156d2f9e1953eba1f8229ffa1926a0a.pdf
2019-09-23
257
264
کنه کش
کنه قرمز اروپایی
کارایی و باغ های سیب
مریم
رضائی
marezaie@ut.ac.ir
1
موسسه تحقیقات گیاه پزشکی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
هاشم
کمالی
hashemkamali@gmail.com
2
مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان خراسان رضوی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، مشهد، ایران
AUTHOR
داود
شیردل
marezaiie@yahoo.com
3
مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان آذربایجان شرقی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تبریز، ایران
AUTHOR
غلامعلی
اکبرزاده شوکت
gshoukat@gmail.com
4
مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان آذربایجان غربی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ارومیه، ایران
AUTHOR
اربابی، م.؛ اکبرزاده شوکت، غ.ع. و کمالی،ه.، 1381. آزمایش فرمولاسیون جدید حشره/ کنه کش دانیتول FL.10% علیه کنه قرمز اروپایی (Panonychus ulmi Koch) در باغات سیب ایران. پانزدهمین کنگره گیاهپزشکی ایران . 233 صفحه.
1
آمارنامه کشاورزی .1396. جلد سوم. محصولات باغی. وزارت جهاد کشاورزی. معاونت برنامه ریزی و اقتصادی. مرکز فناوری اطلاعات و ارتباطات. 239 صفحه.
2
حسینی نیا، ا.؛ پورمیرزا، ع.؛ صفرعلی زاده، م. و ارومچی، ح.، 1385. مقایسه تأثیر روغن دانه چریش و سموم هگزی تیازوکس و پروپارژیت روی کنه قرمز اروپاییPanonychus ulmi در شرایط آزمایشگاهی. مجله دانش کشاورزی. دوره 16، شماره 3، صفحات 237 تا 245.
3
جعفری، م.؛ خسروشاهی، م. و مافی، ش.، 1377 . بررسی تأثیر کنه کش جدید فن پیروکسیمیت روی کنه قرمز مرکبات و ارزیابی و مقایسه آن با سایر کنه کش های متداول در مازندران، سیزدهمین کنگره گیاهپزشکی ایران، 120 صفحه.
4
خانجانی، م .و حدادایرانی نژاد، ک.، 1385 .کنه های زیان آور محصولات کشاورزی ایران .انتشارات دانشگاه بوعلی سینا همدان. 526 صفحه.
5
طالبی، خ.، 1385. سم شناسی آفت کش ها. انتشارات دانشگاه تهران. 492 صفحه.
6
غیبی، م. و طاهری، ی.، 1393. تأثیر کنه کش انویدور اسپید (Envidor speed) علیه کنه تارتن انجیر Eotetranychus hirsti (Acari: Tetranychidae). فصلنامه گیاه پزشکی. جلد 6، شماره 3، صفحات 211 تا 223.
7
Fischer, R. and Benet Buchholz, J., 2002. Chemistry and stereochemistry of Spirodiclofen (BAJ2740). Pflanzen Schutz- Nacbrichten Bayer. Vol. 55, No. 2-3, pp: 137-148.
8
Haug, G. and Hoffmann, H., 1989. Chemistery of plant protection. Springer, Verlag. Vol. 2.
9
Henderson, C.F. and Tilton, E.W., 1955. Teast with acaricides against the brow wheat mite. Journal of Economic Entomology. Vol. 48, pp: 157-161.
10
Maeyer, L. and Geerinck, P., 2011. The multiple target use of spirodiclofen (Envidor 240SC) in IPM pomefruit in Belgium. Communication in Agricultural and Applied Biological Sciences. Vol. 4, No. 1, pp: 225-232.
11
Marcic, D.; Mutavdzic, S.; Prjana, M. and Peric, P., 2011. Field and greenhouse evaluation of spirodiclofen against Panonychus ulmi and Tetranychus urticae in Serbia. Zoosymposia. Doi, http://dx.doi.org./10.11646/zoosymposia.
12
Meyer, M.K.P., 1987. African Tetranychidae (Acari: Prostigmata) with refrences of the world genera. Republic of South Africa, Department of Agriculture and Water Supply. Entomology Memoir. Vol. 69, pp: 72-74.
13
SAS Inc. 2003. Version 9.1. SAS Institute Inc. Cary. Nc. USA.
14
SPSS Inc. 2012. IBM SPSS Statistics for Windows, version 21.0.Armonk, NY: IBM Crop.
15
Tomlin, C.D.S., 2003. The pesticides Manual. BCPC. 1343 p.
16
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی باقیمانده آفت کش ها (دیازینون، ایمیداکلوپرید، پریمیکارب و استامی پراید) در محصول سیب زمینی (واریته چیلی) در ایران
محصولات کشاورزی به خصوص سبزی ها و میوه ها، بدون اطلاع از تأثیر نهایی آفت کش ها، مکرراً سمپاشی می شوند و برخی از کشاورزان نیز دوره "پرهیز از مصرف" یعنی مدت زمان بین سمپاشی تا برداشت را رعایت نمی کنند. در گلخانه ها جهت مبارزه با آفات، حشره کش های دیازینون (EC 60%)، ایمیداکلوپرید (SC 35%)، پریمیکارب (WP 50%) و استامیپراید (SP 20%) مورد استفاده قرار می گیرند. در این تحقیق میزان باقی مانده سموم ذکر شده در محصول سیب زمینی (Solanum tuberosum) واریته چیلی، در روزهای مختلف پس از مورد بررسی قرار گرفته است. در این تحقیق نمونه برداری محصول تحت اثر سموم دیازینون، ایمیداکلوپرید، پریمیکارب و استامی پراید قرار گرفته بود، انجام پذیرفت. در این مرحله برای تعیین روند کاهش سم در روزهای مختلف پس از سم پاشی، نمونه برداری در بازه های زمانی 2، 5، 7، 10، 14، 17 و 21 روز پس از سمپاشی صورت گرفت. استخراج باقی مانده سموم از نمونه ها توسط حلال استونیتریل صورت گرفت و پس از خالص سازی ماده استخراج شده، میزان سم با استفاده از دستگاه کروماتوگرافی مایع با کارائی بالا مجهز به آشکار ساز فرابنفش و مرئی (HPLC-DAD) مورد سنجش قرارگرفت. نتایج نشان دادند که میزان باقی مانده سموم دیازینون، ایمیداکلوپرید، پریمیکارب و استامیپراید سیب زمینی با نزدیک شدن به دوره کارنس کاهش یافت (به طور میانگین از 65 تا 78 درصد مقدار اولیه با میانگین بازدهی 75%P) و بهترین زمان برای برداشت این محصولات، انتهای دوره کارنس این سموم بود. فرآوری ماده غذایی نیز در کاهش این باقی مانده ها موثر بود (به طورمیانگین از 30 تا 99 درصد مقدار اولیه با میانگین بازدهی 75%P) و از بینغلظت آفت کش ها، غلظت آفت کش ایمیداکلوپرید و پریمکارب بیش ترین میزان باقی مانده (1/14 میلی گرم بر کیلوگرم پس از گذشت به ترتیب 21 و 17 روز را داشت و کم ترین میزان مربوط به دیازینون و استامی پراید به میزان 0/05 میلی گرم بر کیلوگرم پس از گذشت به ترتیب 17 و 21 روز بود این در حالی است که پایین ترین میزان در دو آفت کش ایمیداکلوپرید و پریمیکارب معادل 0/2 میلی گرم بر کیلوگرم پس از گذشت به ترتیب 17 و 21 است. براساس این تحقیق نشان می دهد که رعایت دوره کارنس این آفت کش ها کاهش اثرات زیان بار باقی مانده آن ها درپی خواهد داشت و موجب می شود که مصرف کنندگان در معرض خطر باقی مانده قرار نگیرند.
http://www.aejournal.ir/article_100590_6db27ec736b95170ba8fc0d028f13beb.pdf
2019-09-23
265
270
باقی مانده آفت کش
دیازینون
ایمیداکلوپرید
پریمیکارب
استامی پراید
کروماتوگرافی مایع با کارائی بالا
آناهیتا
یزدان پاک
yazdanpaka@yahoo.com
1
گروه حشره شناسی، واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی، شیراز، ایران
AUTHOR
هادی
استوان
ostovan2001@yahoo.com
2
گروه حشره شناسی، واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی، شیراز، ایران
LEAD_AUTHOR
شهرام
حسامی
shahram.hesami@gmail.com
3
گروه حشره شناسی، واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی، شیراز، ایران
AUTHOR
مهدی
غیبی
mehgheibi@yahoo.com
4
گروه حشره شناسی، واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی، شیراز، ایران
AUTHOR
ایمانی، س.؛ طالبی، خ.؛ شجاعی، م. و کمالی، ک.، 1385. اندازه گیری باقی مانده 8 سم آفتکش بر روی گوجه فرنگی و خیار سبز گلخانه ای. هفدهمین کنگره حفاظت از گیاهان ایران، تهران.
1
حاجی رزاق، ن.؛ یادگاریان حاجی آبادی، ل. و حبیبی، ج.،1378. تعیین میزان باقی مانده و دوره کارنس سم دیازینون در گیلاس. سومین همایش ملی توسعه کاربرد مواد بیولوژیک و استفاده بهینه از کود و سم در کشاورزی. موسسه تحقیقات آفات و بیماری های گیاهی. شماره 483.
2
حسن زاده، ن.؛ بهرامی فر، ن. و اسماعیلی ساری، ع.، 1389. بررسی بقایای حشره کش ایمیداکلوپرید در دوره کارنس 21 روزه و کاهش آن با روش های مختلف در خیار گلخانه ای. نشریه حفاظت گیاهان (علوم و صنایع کشاورزی). جلد 24، شماره 4، صفحات 413 تا 418.
3
سبحان اردکانی، س.؛ یونسیان ، م. و جامه بزرگی، س.، 1395. ارزیابی غلظت باقی مانده سم ارگانوفسفره دیازینون در محصولات گلخانه ای (مطالعه موردی: کدو سبز). مجله علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 18، شماره 3، صفحات 141 تا 146.
4
Akoto, O.; Gavor, S.; Appah, M.K. and Apau, J., 2015. Estimation of human health risk associated with the consumption of pesticide-contaminated vegetables from Kumasi, Ghana. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 187, No. 5, pp: 244-250.
5
AOAC. 2005. Method 985.22 For Nonfatty Foods. Pesticide Analytical Manual (PAM). J. AOAC International. Vol. 1, No. 302, pp: 10-16.
6
Aprea, C.; Colosio, C.; Teresa, M.; Claudio, M. and Marco, M., 2002. Biological monitoring of pesticide exposure: a review of analytical methods. J Chromatogr B Analyt Technol Biomed Life Sci. Vol. 769, No. 2, pp: 191-219.
7
Athanasopoulos, P.E.; Pappas, C.; Kyriakidis, N.V. and Thanos, A., 2005. Degradation of methamidophos on soultanina grapes on the vines and during refrigerated storage. Food Chemistry. Vol. 91, pp: 235-240.
8
Barriada-Pereira, M.; Serodio, P.; Gonzalez-Castro, M.J. and Nogueira, J.M., 2012. Determination of organ chlorine pesticides in vegetable matrices by stirbar sportive extraction with liquid desorption and large volume injection-gas chromatography-mass spectrometry towards compliance with European Union directives. J Chromatogr A. Vol. 1217, No. 1, pp: 119-126.
9
Cengiz, M.; Certel, M. and Gocmen, H., 2006. Residue contents of DDVP (Dichlorvos) and diazinon applied on cucumbers grown in greenhouses and their reduction by duration of a pre-harvest interval and post harvest culinary applications. Food Chemistry. Vol. 98, pp: 127-135.
10
Cervera, M.I.; Portolés, T.; Pitarch, E.; Beltrán, J. and Hernández, F., 2012. Application of gas chromatography time-of-flight mass spectrometry for target and non-target analysis of pesticide residues in fruits and vegetables. Journal of Chromatography A. Vol. 1244, pp: 168-177.
11
Gun, S. and Kan, M., 2009. Pesticide Use in Turkish Greenhouses: Health and environmental consciousness. Polish Journal of Environmental Studies. Vol. 18, No. 4, pp: 607-615.
12
Jallow, M.F.A.; Awadh, D.G.; Albaho, M.S.; Devi, V.Y. and Ahmad, N., 2017. Monitoring of Pesticide Residues in Commonly Used Fruits and Vegetables in Kuwait. International Journal of Environmental Research and Public Health. Vol. 14, No. 8, pp: 833-840.
13
Kaushik, P.; Yadav, Y.K.; Dilbaghi, N. and K, G.V., 2008. Enrichment of vermicomposts prepared from cow dung spiked solid textile mill sludge using nitrogen fixing and phosphate solubilizing bacteria. Environmentalist. Vol. 28, pp: 283-287.
14
Kumar, B.; Mukherjee, D.P.; Sanjay, K.; Meenu, M.; Dev, P.; Singh, S.K. and Sharma, C.S., 2011. Bioaccumulationof heavy metals in muscle tissue of fishes from selected aquaculture ponds in east Kolkata wetlands. Annals of Biological Research. Vol. 2, No. 5, pp: 125-134.
15
Motamedzadegan, A.; Mortazavi, A.; Maghsoodloo, Y.; Amiri, B. and Esmailzadeh Kenari, R., 2006. Evaluation of pesticide residues in melonssprayed three time with diazinon in Khorasan-Razavi province. Agricultural Science and Technology Journal. Vol. 2, pp: 13-19.
16
Okihashi, M.; Kitagawa, Y.; Akutsu, K.; Obana, H. and Tanaka, Y., 2005. Rapid method for the determination of 180 pesticide residues in foods by gas chromatography/mass spectrometry and flame photometric detection. J Pest Sci. Vol. 30, No. 4, pp: 368-377.
17
Zhao, P.; Wang, L.; Zhou, L.; Zhang, F.; Kang, S. and Pan, C., 2012. Multi-walled carbon nanotubes as alternative reversed-dispersive solid phase extraction materials in pesticide multi-residue analysis with QuEChERS method, Journal of Chromatography A. Vol. 1225, pp: 17-25.
18
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی همبستگی بین دانهبندی و موادآلی موجود در رسوب با شاخصهای میکروبی در کانالهای مجاور استخرهای پرورش میگو در خور تیاب
نمونه برداری از رسوبات منطقه تیابجنوبی به جهت بررسی دانه بندی رسوبات بستر، باکتری های پاتوژن از فروردین تا مهر 96 طی چهارده گشت یعنی هر دو ماه یکبار صورت گرفت. ذرات شن در ایستگاه 2 با مقدار 1/5±70 در رتبه 1 و پس از آن ایستگاه 3 و 1 به ترتیب با مقادیر 2±62 و 1/7±60 در رتبههای بعد قرار دارند. ذرات سیلت در ایستگاه 1 با مقدار 1/8±22/6 درصد دارای بیش ترین و سپس ایستگاههای 3 و 2 به ترتیب با 2/5±15/7 و 3/2±11/9 درصد در رتبههای بعد قرار دارند. ذرات رس در ایستگاه 3 با 1/8±21/7 درصد دارای بیش ترین و ایستگاههای 2 و 1 با 1/8±18 و 2/1±16/3 درصد در مراتب بعدی قرار دارند. مقادیر کل مواد آلی با 0/4±6/3 درصد در ایستگاه 2 دارای بیش ترین و ایستگاههای 3 و 1 با مقادیر 0/6±6 و 0/6±5/6 درصد پس از ایستگاه 2 قرار دارند. مقادیر میانگین T count در 3 ایستگاه نشان میدهد ایستگاههای 3، 2 و 1 به ترتیب با مقادیر 380952، 295357 و 126904 عدد در لیتر در رتبههای 1 تا 3 قرار دارند. مقادیر میانگین MTN نشان میدهد که ایستگاههای 1، 2 و 3 به ترتیب با میانگین 6/31، 6/24 و 6/16 در رتبههای 1 تا 3 قرار دارند. میانگین کلی فرم با مقادیر 0/63، 0/62 و 0/61 به ترتیب به ایستگاههای 1، 2 و 3 اختصاص یافتند. میتوان نتیجه گرفت که پسابهای حاصل از پرورش میگو بر میزان مواد آلی و نیز تعداد کل کلنیها اثر افزایشی داشته است.
http://www.aejournal.ir/article_100624_cd986cc9ec01efa23a28b5893562b27e.pdf
2019-09-23
271
278
تیاب
کلیفرم
کلنی
پساب
رسوب
مطهره
رهبری
motahare_rahbari@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاداسلامی، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
دلارام
نخبه زارع
adelaram_zare@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاداسلامی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
استکی، ع.ع.، 1383. ساختار اکوسیستم و متابولیسم جمعیت در استخرهای پرورش ماهی. پایان نامه دکترا، آکادمی علوم مجارستان، دانشگاه کوشوت دبرسن و انستیتو تحقیقاتی سارواش.
1
اکبرزاده، غ.، 1383. بررسی اثرات زیست محیطی ناشی از فعالیت کارگاه های پرورش میگو در منطقه تیاب (استان هرمزگان). موسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، بندرعباس. 145 صفحه.
2
ایلمو، م.، 1368. اصول بررسی های لیمنولوژیکی. مازندران.
3
جوکار، ک.، 1380. گزارش نهایی بررسی هیدربیولوژی آب های منطقه خوران منشعب از لافت و خمیر. مرکز تحقیقات آبزیان خلیج فارس و دریای عمان. 120 صفحه.
4
خدادادی جوکار، م. و رزمجو. غ.، 1372. بررسی مقدماتی خورهای مهم استان هرمزگان. مرکز تحقیقات شیلاتی دریای عمان. 60 صفحه.
5
مرتضوی، م.ص.، 1378. بررسی وضعیت اکولوژیک استخرهای پرورش میگو در منطقه تیاب. موسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، بندرعباس. 76 صفحه.
6
Aguirre, G.G.; Sanchez, M.J.G.; Perez, C.R.; Palacios, M.A.; Trujillo-Rodriguez, N. and DeLaCruz, H., 2010. Pathogenicity an dinfection route of Vibrio parahaemolyticusin American White Shrimp, Litopenaeus vannamei. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 41, No. 3, pp: 464-470.
7
Al- Thobaiti, S. and James, C.M., 1998. Saudi Arabian shrimp succession hyperhaline waters. Fish farmer. Vol. 12, No. 4.
8
Chien, Y.H., 1992. Water quality requirement and management for marine shrimp culture. Dep of Aqua. National Taiwan Ocean university keelung, Taiwan. pp: 30-42.
9
Claude, E.B. and Tanner, M., 2007. Coliform Organisms in Waters of Channel Catfish Ponds.
10
Emara, H.T., 1990. Study of Oxygen and phosphate in the water of the Southern Arabian Gulf and the Gulf of Oman. Acta Adriat. Vol. 31, pp: 45-57.
11
Gozari, M., 2009. Evaluation of antagonistic properties of isolated actinomycetes from the Persian Gulf sediments against fish and shrimp pathogenic Vibriospp. MSc.thesis. Microbiology Department. Islamic Azad University Branch of Qom. 110 p. (in Persian)
12
Holme, N.A. and McIntyre, A.D., 1984. Methods for the study of marine Benthos. pp: 42-43.
13
Jones, A.B. and Preston, N.P., 2001. Integrated treatment of shrimp effluent by sedimentation, oyster filteration and macroalgal absorbtion: a laboratory scale study. Aquaculture. Vol. 193, pp: 155-178.
14
Karim, R.; Uddin, N.; Khalilur, R. and Uddin, A., 2018. Microbiological Study of Costal Shrimp Aquaculture Production Systemof Bangladesh. Department ofMicrobiology, University of Chittagong, Chittagong 4331, Bangladesh. Journal of Biology and Life Science. Vol. 9, No. 1, pp: 251-260.
15
Majidinasab, A., 1998. Diseases of farmed shrimp. Noor bakhsh publications section. Tehran. 208 p. (in Persian)
16
Stirlling, H.P. and Phillips, M.J., 1990. Water quality management for aquaculture and fisheries. Bangladesh aquaculture and fisheries reasource unite. Ins. Of Aqu. Niv of Stirling. 21 P.
17
Sansanayuth, P.; Phadungchep, A.; Ngammontha, S. Ngdagam, S.; Sukasem, P.; Hoshino, H. and Ttabucanon, M.S., 1996. Environmental research and Training center, pathumthani, Thailand. Wat. Sci. Tech. Vol. 34, No. 11, pp: 93-98.
18
Tookwinas, S.; Mulem, S.F. and Songsagjinda, P., 1993. Quality and quantity of discarge water from intensive marin shrimp farms at hung Krabaen Bay, chanthaburi Province, Thiland., proceedinges of Joint seminar marine science. Songkhla (Thiland). pp: 30-40.
19
Wetzel, R.G., 1975. Limnology. Sounders, W.B., Philadelphia. 743 p.
20
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر سطوح مختلف سیاه دانه جیره غذایی بر فاکتورهای بیوشیمیایی همولنف میگوی پاسفید غربی (Penaeus vannamei)
در این آزمایش تاثیر سطوح مختلف سیاه دانه جیره بر برخی از فاکتورهای بیوشیمیایی میگوی پاسفید غربی (Penaeus vannamei) مورد بررسی قرار گرفت. پنج جیره با سطوح مختلف سیاه دانه شامل صفر (شاهد)، 0/5، 1/5، 3 و 5 درصد در قالب پنج تیمار و هر تیمار شامل سه تکرار و هر تکرار نیز محتوی 40 عدد میگو (گرم 0/2±7/5) طراحی شدند. بعد از 12 هفته غذادهی، سطوح گلوکز، آلکالین فسفاتاز (ALP) و سوپراکسید دیسموتاز (SOD) پلاسمای میگو، در تیمارهایی که سیاهدانه مصرف کرده بودند به طور معنی داری از تیمار شاهد کم تر بود (0/05>P). هم چنین میزان کراتینین (CREA)، پروتئین کل، ازت اوره همولنف (Hemolymph Urea Nitrogen)، اسیداوریک (Uric acid) و اوره (Urea/HUN liquid) نیز در تیمارهای سیاه دانه از تیمار شاهد کم تر بود اما این تفاوت ها معنی دار نبودند (0/05<P). از لحاظ میزان کلسیم و منیزیم، هیچ تفاوت معنی داری بین تیمارها مشاهده نشد (0/05<P)، هم چنین افزایش معنی داری در میزان فسفات در تیمارهای سیاه دانه 1/5 و 5 درصد نسبت به گروه شاهد مشاهده گردید (0/05>P). در مجموع آزمایش حاضر نشان داد که افزودن سیاه دانه در سطوح 1/5 و 3 درصد، به جیره می تواند تاثیر مطلوبی بر فاکتورهای بیوشیمیایی همولنف میگوی پاسفید غربی، داشته باشد و به تولید پایدار میگو کمک کند.
http://www.aejournal.ir/article_100706_e2b5f290efaff51370d8009aba828f91.pdf
2019-09-23
279
286
همولنف
سیاه دانه
میگوی پاسفید غربی
هموسیت
پلاسما
محمد
نیرومند
mohamad_niromand@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
آرش
اکبرزاده
akbarzadeh@ut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
عیسی
ابراهیمی
e_ebrahimi@iut.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
سیدعلیرضا
سبحانی
arsobhani134@yahoo.com
4
گروه پاتولوژی، دانشگده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
اردشیر
شیخ احمدی
a.sheikhahmadi@gmail.com
5
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه کردستان، سنندج، ایران
AUTHOR
Abd Elmonem, A.; Shalaby, S. M.M. and El-Dakar, A.Y., 2002. Response of red tilapia to different levels of some medicinal plants by-products: black seed and roquette seed meals. in: Proceeding of the 1st Conference on Aquaculture El Arish, Egypt. pp: 247-260.
1
Ahmed, M.; Attia, A.M. and Nasr, H.M., 2009. Dimethoate-induced changes in biochemical parameters of experimental rat serum and its neutralization by black seed (Nigella sativa L.) oil. International Journal of Agliculture Science. Vol. 42, No. 2, pp: 87-94.
2
Al-Ankari, A.S., 2005. Immunomodulating effects of black cumin and oxytetracycline in pigeons. Journal of Immunopharmacology and Immunotoxicology. Vol. 27, pp: 515-520.
3
Al-Awadi, F.M.; Fatania, H. and Shamte, U., 1991. The effect of a plants mixture extract on liver gluconeogenesis in streptozotocin induced diabetic rats. Diabetes Research (Edinburgh, Scotland). Vol. 18, No. 4, pp:163-168.
4
Al-Gaby, A.M., 1988. Amino acid composition and biological effects of supplementing broad bean and corn proteins withNigella sativa (Black cumin) cake protein. Nahrung. Vol. 42, pp: 290-294.
5
Al-Hader, A.; Aqel, M. and Hasan, Z., (1993). Hypoglycemic effects of the volatile oil of Nigella sativa seeds. Journal of Pharmaceutical Biology. Vol. 31, No. 2, pp: 96-100.
6
Al-Homidan, A.; Al-qarawi, A.A.; Al-waily, S.A. and Adam, S.E.I., 2002. Response of broiler chicks to dietary Rhazya stricta and Nigella sativa. British Poultry Science. Vol. 43, pp: 291-296.
7
Ali, B.H. and Blunden, G., 2003. Pharmacological and toxicological properties of Nigella sativa. PhytotherapyResearch: PTR. Vol. 17, pp: 299-305.
8
Al-Okbi1, S.Y.; Mohamed, D.A.; Hamed, T.E. and Edris, A.E., 2013. Potential protective effect of Nigella sativa crude oils towards fatty liver in rats. Euroup Journal Lipid Science Technology. No. 115, pp: 774-782.
9
Alsaif, M.A., 2007. Effect of Thymoquinone on Ethanol-induced Hepatotoxicity in Wistar Rats. Journal of Medicine Science. Vol. 7, No. 7, pp: 1164-1170.
10
Ames, B.N.; Cathcart, R. and Schwiers, E., 1981. Uric acid provides an antioxidant defense in human against oxidant and radical caused aging and cancer: a hypothesis. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. Vol. 78, pp: 6858-6862.
11
Atta, M.B., 2003. Some characteristics of Nigella (Nigella sativa L.) seed cultivated in Egypt and its lipid profile. Food Chemistry Journal. No. 83, pp: 63-68.
12
Badary, O.A., 1999. Thymoquinone attenuates ifosfamide-induced fanconi syndrome in rats and enhances its antitumor activity in mice. Journal of Ethnopharmacology. Vol. 67, pp: 135-142.
13
Bilen, S.; Altunoglu Çelik, Y.; Ulu, F. and Biswas, G., 2016b. Innate immune and growth promoting responses to caper (Capparis spinosa) extract in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish and Shellfish Immunology. Vol.57, pp: 206-212.
14
Bilen, S.; Bulut, M. and Bilen, M.A., 2011. Immunostimulant effects of Cotinus coggyria on rainbow trout (Oncorhynchus mykiss), Fish and Shellfish Immunology. Vol. 30, pp: 451-455.
15
Bilen, S.; Ünal, S. and Güvensoy, H., 2016a. Effects of oyster mushroom (Pleurotus ostreatus) and nettle (Urtica dioica) methanolic extracts on immune responses and resistance to Aeromonas hydrophila in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 454, pp: 90-94.
16
Bilen, S.; Yılmaz, S.; Bilen, M.A. and Biswas, G., 2014. Effects of dietary incorporation of tetra (Cotinus coggygria) extract on immune response and resistance to Aeromonas hydrophila in koi carp (Cyprinus carpio), 7 pages, Israeli Journal of Aquaculture. E Bamidgeh. Vol. 66, pp: 1-6.
17
Bowles, B.L. and Miller, A.J., 1993. Antibotulinal properties of selected aromatic and aliphatic aldehydes. Journal of Food Protection. Vol. 56, pp: 788-794.
18
Braak, K.V.D., 2002. Haemocytic defence in black tiger shrimp (Penaeus monodon). PhD thesis. Fisheries Department. Wageningen University. The Netherlands. 168 p.
19
Devi, K.; Sarma, H. and Kumar, S., 2008. Estimation of essential and trace elements in some medicinal plants by PIXE and PIGE techniques. Nuclear Instruments and Methods in Physics Res. B. Vol. 266, pp: 1605-1610.
20
Djangmah, J.S., 1970. The effects of feeding and starvation on copper in the blood and hepatopancreas, and on blood proteins of Crangon Íulgaris Fabricius. Comparative of Biochemistry and Physiology. Vol. 32, pp:709-731.
21
Downs, C.; Fauth, J.E. and Woodley, C.M., 2001. Assessing the health of grass shrimp (Palaemonetes pugio) exposed to natural and anthropogenic stressors: a molecular biomarker system. Marine Biotechnology. Vol. 3, pp: 380-397.
22
Dugenci, S.K.; Arda, N. and Candan, A., 2003. Some medicinal plants as immunostimulant for fish. Journal of Ethnopharmacology. Vol. 88, No. 1, pp: 99-106.
23
El-Dakhakhny, M.; Mady, N.; Lembert, N. and Ammon, H.P., 2002. The hypoglycemic effect of Nigella sativa oil is mediated by extrapancreatic actions. Planta Medica. Vol. 68, pp: 465-466.
24
Ellis, A.E., 1990. Lysozyme Assays. Techniques in Fish Immunology. pp:101-103.
25
Farag, R.S.; Badei, A.Z.M.; Hewedi, F.M. and El- Baroty, G.S.A., 1989. Antioxidant activity of some spice essential oils on linoleic acid oxidation in aqueous media. Journal of the American Oil Chemists' Society. Vol. 66, pp: 792-799.
26
Garba, S.H.; Adelaye, A.B. and Mshelia, L.Y., 2007. Histopathological and biochemical changes in the rats kidney following exposure to a pyrethroid based mosquito coil. Journal of Applied Sciences. Research. Vol. 3, pp: 1788-1793.
27
Harikrishnan, R.; Kim, J.S.; Kim, M.C.; Balasundaram, C. and Heo, M., 2011. Lactuca indica extract as feed additive enhances immunological parameters and disease resistance in Epinephelus bruneus to Streptococcus iniae, Aquaculture. Vol. 318, pp: 43-47.
28
Heshmati, N. and Namazi, M., 2015. Effects of black seed (Nigella sativa) on metabolicparameters in diabetes mellitus: a systematic review, Complement. Therapeutic Medicine. Vol. 23, pp: 275-282.
29
Hoffmann, J.A.; Kafatos, F.C.; Janeway, C.A. and Ezekowitz, R.A., 1999. Phylogenetic perspectives in innate immunity. Science. Vol. 284, pp: 131-138.
30
Hsieh, S.L.; Ruan, Y.H.; Li, Y.C.; Hsieh, P.S.; Hu, C.H. and Kuo, C.M., 2008. Immune and physiological responses in pacific white shrimp (Penaeus vannamei) to vibrio alginolyticus. Aquaculture. Vol. 275, pp: 335-341.
31
Hsu, S.W. and Chen, J.C., 2007. The immune response of white shrimp Penaeus vannamei and its susceptibility to vibrio alginolyticus under sulfide stress. Aquaculture. Vol. 271, pp: 61-69.
32
Itami, T.; Asano, M. and Tokushige, K., 1998. Enhancement of disease resistance of Kuruma shrimp, Penaeus japonicas. after oral administration of peptidoglycan derived from Bifidobacterium thermophilum. Aquaculture. Vol. 164, pp: 277-288.
33
Jiravanichpaisal, P.; Lee, B.L. and Söderhäll, K., 2006. Cell-mediated immunity in arthropods: hematopoiesis, coagulation, melanization and opsonization. Immunobiology. Vol. 211, pp: 213-236.
34
John, C.; Mesalhy, S.; Rezk, M.; El Naggar, G. and Fathi, M., 2007. Effect of some immunostimulants as feed additives on the survival and growth performance of Nile tilapia, Oreochromis niloticus and their response to artificial infection, Egypt. Journal of Aquatic Biology and Fisheries. Vol. 11, pp: 1299-1308.
35
Jueliang, P.; Chuchird, N. and Limsuwan, C., 2013. The effects of probiotic, b-1,3-glucan and organic acid on pacific withe shrimp (Litopenaeus vannamei) Immune system and survival upon challenge with ibrio harveyi. Kasetsart University fisheries research bulletin. Vol. 37, No. 3.
36
Kaleem, M.; Kirmani, D.; Asif, M.; Ahmed, Q. and Bano, B., 2006. Biochemical effects of Nigella sativa L. seeds in diabetic rats. Indian Journal of Experimental Biology. Vol. 44, pp: 745-748.
37
Kanter, M.; Akpolat, M. and Aktas, C., 2009. Protective effects of the volatile oil of Nigella sativa seeds on beta-cell damage in streptozotocin-induced diabetic rats: a light and electron microscopic study. Journal of Molecular Histology. Vol. 40, pp: 379-385.
38
Kanter, M.; Coskun, O.; Korkmaz, A. and Oter, S., 2004. Effects of Nigella sativa on oxidative stress and beta-cell damage in streptozotocin-induced diabeticrats. The Anatomical Record. Part A, Discoveries in Molecular, Cellular, and Evolutionary Biology. Vol. 279, pp: 685-691.
39
Kennedy, L. and Baynes, J.W., 1984. Non-enzymatic glycosylation and the chronic complications of diabetes. An Overview. Diabetologica. Vol. 24, pp: 93-98.
40
Khan, S.H.; Ashraf-Anjum, M.; Parveen, A.; Khawaja, T. and Ashraf, N.M., 2013. Effects of black cumin seed (Nigella sativa L.) on performance and immune system in newly evolved crossbred laying hens. Veterinary Quarterly. Vol. 33, No. 1, pp: 13-19
41
Kumar, V.; Sinha, A.K. and Tidwell, J.H., 2016. Metabolic implicatins of ietary cholesterol in shrimp.Aquaculture, Meeting Abstract.
42
Kuo, C.M.; Hsu, C.R. and Lin, C.Y., 1995. Hyperglycaemic effects of dopamine in tiger shrimp, Penaeus monodon. Aquaculture. Vol. 135, No. 1, pp: 61-72.
43
Liu, C.H.; Cheng, W.; Hsu, J.P. and Chen, J.C., 2004. Vibrio alginolyticus infection in the white shrimp Litopenaeus vannamei confirmed by polymerase chain reaction and 16S rDNA sequencing. Diseases of Aquatic Organisms. Vol. 61, pp: 169-174.
44
Lo, C.F.; Chang, Y.S.; Peng. S.E. and Kou, G.H., 2003. Major viral diseases of Penaeus monodon in Taiwan. Journal of Fisheries Society of Taiwan. Vol. 30, pp: 1-13.
45
Mahjoubi, S.A.; Fetoui, H. and Zeghal, N., 2008. Nephrotoxicity induced by dimethoate in adult rats and their suckling pups. Pesticide. Biochemistry and Physiology. Vol. 91, pp: 96-103.
46
Mathiesen, A.M., 2012. The State of World Fisheries and Aquaculture (SOFIA) FAO Fisheries and Aquaculture Department Food and Agriculture Organization of the United Nations Rome, Italy.
47
Mathiesen, A.M., 2017. The State of World Fisheries and Aquaculture (SOFIA) FAO Fisheries and Aquaculture Department Food and Agriculture Organization of the United Nations Rome, Italy. 30 p.
48
Meral, I.; Yener, Z.; Kahraman, T. and Mert, N., 2001. Effect of Nigella sativa on glucose concentration, lipid peroxidation, anti-oxidant defence system and liver damage in experimentally-induced diabetic rabbits. Journal of Veterinary Medicine. A, Physiology, Pathology, Clinical Medicine. Vol. 48, pp: 593-599.
49
Mohtashami, R.; Amini, M.; Fallah Huseini, H.; Ghamarchehre, M.; Sadeqhi, Z.; Hajiagaee, R. and Fallah Huseini, A., 2011. Blood Glucose Lowering Effects of Nigella Sativa L. Seeds Oil in Healthy Volunteers: A Randomized, Double-Blind, Placebo-Controlled Clinical Trial. Journal of Medicinal Plants. Vol. 10, No. 39.
50
Moneim, A.; El-Feki, M. and Salah, E., 1997. Effect of Nigella sativa, fish oil and gliclazide on alloxan diabetic rats 1-biochemical and histo-pathological studies. Journal of the Egyptian- German Society of Zoology. Vol. 23, pp:237-265.
51
Morsi, N.M., 2000. Antimicrobial effect of crude extracts of Nigella sativa on multiple antibiotics-resistant bacteria. Acta Microbiologica Polonica. Vol. 49, pp: 63-74.
52
Nasir, Z.; Abid, A.R.; Hayat, Z. and Shakoor, H.I., 2005. Effect of kalongi (Nigella sativa) seeds on egg production and quality in white Leghorn layers. Journal of Animal and Plant Science. Vol. 15, pp: 22-24.
53
Neves, C.A.; Santos, E.A. and Bainy, A.C.D., 2000. Reduce superoxide dismutase activity in Palaemonetes argentines (Decapoda, Palemonidae) infected by Probopyrus ringueleti (Isopoda, Bopyridae). Disease of Aquatic Organisms. Vol. 39, pp: 155-158.
54
Nwanjo, H.U.; Okafor, M.C. and Oze, G.O., 2005. Changes in biochemical parameters of kidney function in rats co-administered with chloroquine and aspirin. Journal ofClinical Science. Vol. 23, pp: 10-12.
55
Palacios, E.; Ibarra, A.M. and Racotta, I.S., 2000. Tissue biochemical composition in relation to multiple spawning in wild and pond-reared Penaeus vannamei broodstock. Aquaculture. Vol. 185, pp: 353-371.
56
Rathee, P.S.; Mishra, S.H. and Kaughal, R., 1982. Antimicrobial activity of essential oil, fixed oil and unsaponifiable matter of Nigella sativa Linn. Indian. Journal of Pharmacology Science. Vol. 44, pp: 8-10.
57
Rodriguez, J. and Le Moullac, G., 2000. State of the art of immunological tools and health control of penaeid shrimp. Aquaculture. Vol. 191, pp: 109-119.
58
Salem, M.L., 2005. Immunomodulatroy and therapeutic properties of the Nigella sativa L. seed. International Journal of Immunopharmacology. Vol. 5, pp: 1749-1770.
59
Shrififar, F.; Assadipour, A.; Moshafi, M.H.; Alishahi, F. and Mahmoudvand, H., 2016. Bioassay Screening of the Essential Oil and Various Extracts of Nigella sativa L. Seeds Using Brine Shrimp Toxicity Assay. Journal of Herbal Medicine. Vol. 2, No. 1, pp: 26-31.
60
Sharif Rohani, M.; Dashtiannasab, A.; Ghaednia, B.; Mirbakhsh, M.; Yeganeh, V. and Vahabnezhad, A., 2013. Investigation of the possibility use of Zataria multiflora (Avishan-e Shirazi) essence in control of fungal contamination of cultured shrimp, Litopenaeus vannamei. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol.12, pp: 454-464.
61
Söderhäll, K. and Smith, V.J., 1983. Separation of the haemocyte populations of Carcinus maenas and other marine decapods, and prophenoloxidase distribution. Developmental and Comparative Immunology. Vol. 7, pp: 229-239.
62
Srinivasan, K., 2017. Cumin (Cuminum cyminum) and black cumin (Nigella sativa) seeds: traditional uses, chemical constituents, and nutraceutical effects. Food Quality and Safety. No. 2, pp: 1-16.
63
Takruri, H.R.H. and Dameh, M.A.F., 1998. Study of the nutritional value of black cumin seeds (Nigella sativa). Journal of the Science of Food and Agriculture. Vol. 76, pp: 404-410.
64
Tan, C.G.; Li, X.Q.; Leng, X.J.; Su, X.G.; Chen, L.; Liu, B.; Ma, F.; Cai, X.Q. and Guo, T., 2014. Effects of supplemental Azomite in diets on growth, mmune function and disease resistance of white shrimp (Litopenaeus vannamei). Aquaculture Nutrition. No. 20, pp: 324-331.
65
Toghyani, M.; Gheisari, A.; Ghalamkari, G. and Mohammadrezaei, M., 2010. Growth performance, serum biochemistry and blood hematology of broiler chicks fed different levels of black seed (Nigella sativa) and peppermint (Mentha piperita). Livestock Science. No. 129, pp: 173-178.
66
Valizadeh, N.; Zakeri, H.R.; Amin- asnafi, G.; Shafiee, A.; Sarkhail, P.; Heshmat, R.; Sereshti, H. and Larijani, B., 2009. Impact of Black seed (Nigella sativa) extract on bone turnover markers in postmenopausal women with osteoporosis. Vol. 17, pp: 20-25.
67
Venkatramalingam, K.; Christopher, J.G. and Citarasu, T., 2007. Zingiber officinalis an herbal appetizer in the tiger shrimp Penaeus monodon (Fabricius) larviculture. Aquaculture Nutrition. Vol. 13, pp: 439-443.
68
Wang, H.; Dai, A.; Liu, F. and Guan, Y., 2013. Effects of dietary astaxanthin on the immune response, resistance to white spot syndrome virus and transcription of antioxidant enzyme genes in Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei. Iranian Journal of Fisheries Sciences.Vol. 3, No. 2,
69
pp: 699-718.
70
Warner, H.R., 1994. Superoxide dismutase, aging, and degenerative disease. Free Radical Biology and Medicine. Vol. 3, pp: 249-258.
71
Winston, G.W., 1991. Oxidants and antioxidants in aquatic animals. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 100, pp: 173-176.
72
Yalçın, S.; Erol, H.; Buğdaycı, K.E.; Özsoy, B. and Çakır, S., 2009. Effects of dietary black cumin seed (Nigella sativa L.) on performance, egg traits, egg cholesterol content and egg yolk fatty acid composition in laying hens. Journal of the Science of Food Agriculture. Vol. 89, pp: 1737-1742.
73
Yang, C.; Chen, N.; Lu, L.; Chen, S. and Lai, C., 2014. Effect of Mushroom Beta Glucan on Immune and Haemocyte Response in Shrimp Litopenaeus vannamei. Journal Aquaculture Research Development. Vol. 5, No. 6, p: 275.
74
Yu, C.I. and Song, Y.L., 2000. Outbreaks of Taura syndrome in Pacific white shrimp Penaeus vannamei cultured in Taiwan. Fish Pathology. Vol. 35, pp: 21-24.
75
Zaoui, A.; Cherrah, Y.; Mahassini, N.; Alaoui, K.; Amarouch, H. and Hassar, M., 2002. Acute and chronic toxicity of Nigella sativa fixed oil. Phytomedicine. Vol. 9, No. 1, pp: 69-74.
76
Zerin, M.; Karakilpk, A.Z.; Nazligiil, Y. and Bitiren, M., 2004. Ratlarda deneysel karaciber hasan uzerine corek otu yagrnm koruyucu rolu. Journal of Medicine. Science. Vol. 24, pp: 598-631.
77
ORIGINAL_ARTICLE
میزان صید در واحد تلاش صیادی چهار نوع تله کوزهای، قیفی، نیم کروی و استوانهای برای صید شاه میگوی آب شیرین (Astacus leptodactylus) در استخرهای پرورشی
این تحقیق به منظور بررسی میزان صید در واحد تلاش صیادی شاه میگوی آب شیرین (Astacus leptodactylus) رهاسازی شده در استخرهای پرورشی واقع در حسینکوه شولم، متعلق به پژوهشکده آبزیپروری آب های داخلی کشور در استان گیلان انجام شد. چهار نوع تله کوزه ای، قیفی، نیم کروی و استوانه ای با اندازه چشمه 8 میلی متر (گره تا گره مجاور) متناسب با مشخصات زیست شناختی و بوم شناختی شاه میگوی آب شیرین طراحی، ساخته و در سه استخر پرورشی مستقر گردیدند. از هر نوع تله در هر استخر 4 عدد به کار گرفته شد. تله ها به صورت طولی و پیوسته به هم متصل گردیدند و هر 24 ساعت مورد بازبینی قرار گرفتند. دوره زمانی نمونه برداری 60 روز درنظر گرفته شد. در مجموع، 2002 عدد شاه میگوی آب شیرین شامل 986 عدد نر و 1016 عدد ماده صید گردید. نسبت جنسی نر به ماده در نمونههای صید شده 1: 1/03 به دست آمد. بیش ترین درصد فراوانی شاه میگوهای صید شده در تله قیفی با 9/88 درصد در طبقه طولی 100-88 میلی متر بود. میزان صید در واحد تلاش صیادی برای تله های کوزه ای، قیفی، نیم کروی و استوانه ای به ترتیب 3/63، 2/43، 1/6 و 0/7 به دست آمد که دارای اختلاف معنی داری بودند (0/05>p). با توجه به نتایج به دست آمده، تله کوزه ای هم از نظر میزان صید در واحد تلاش صیادی و هم از نظر صید اندازه شاه میگوها در طبقات طولی مختلف بهترین عملکرد را داشت.
http://www.aejournal.ir/article_100708_54bd3ab028bff8ed23ab98dceeaa0681.pdf
2019-09-23
287
292
Astacus leptodactylus
صید در واحد تلاش صیادی
تله
استخر پرورش
محمد جواد
وثاقی
javad.vesaghi@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
ایمان
سوری نژاد
i_sourinezhad@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
علی اصغر
خانی پور
aakhanipour@yahoo.com
3
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
علیرضا
ولی پور
valipour40@gmail.com
4
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
احسان
کامرانی
ezas47@gmail.com
5
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
جواهری لو، م.، 1392. بررسی امکان پرورش شاه میگو آب شیرین در استخرهای ذخیره آب کشاورزی استان قم. دومین همایش ملی شیلات و آبزیان ایران. دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس.
1
خانی پور، ع.ا.، 1388. ادوات صیادی و تکنولوژی صید ماهی. انتشارات موسسه تحقیقات شیلات ایران. 422 صفحه.
2
کریمپور، م.؛ تقوی، ا. و خانی پور، ع.ا.، 1383. مقایسه کارآیی تله های تاشو با تله های قیفی در صید شاه میگو آب شیرین. مجله علمی شیلات ایران. سال 14، شماره 2، صفحات 103 تا 110.
3
Aksu, O. and Harlıoğlu, M., 2015. Types of crayfish shelters and shelter usage. Int. J. Pure Appl. Sci. Vol. 1, pp: 53-63. (Turkish)
4
Balık, I.; Özkök, E. and Özkök, R., 2002. Catch per Unit Effort and Size Composition of Crayfish, Astacus leptodactylus Eschscholtz 1823, in Lake İznik. Asian Australasian Journal of Animal Sciences. Vol. 15, No. 6, pp: 884-889.
5
Demirol, F.; Yuksel, F.; Gunduz, F.; Beri, A.; Guler, M.; Yildirim, T. and Zulfu Coban, M., 2017. The Stock Assessment of Crayfish (Astacus leptodactylus Eschscholtz, 1823) in the Keban Dam Lake. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 17, pp: 1373-1380.
6
Holdich, D.M., 2002. Background and functional morphology. In: Holdich, D.M., (Eds.), Biology of freshwater crayfish. MPG Books Ltd, Bodmin, Cornwall, Great Britain. pp: 3-29.
7
Karimpour, M.; Harlioglu, M. and Aksu, O., 2011. Status of freshwater crayfish (Astacus leptodactylus) in Iran. Knowledge and Management of Aquatic Ecosystems. Vol. 401, 18 p.
8
Khanipour, A.A. and Melnikov, V.N., 2007. Determination of suitable trap type for the Caspian Sea crayfish, Astacus leptodactylus eichwaldi, in Anzali coastal area, Iran. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 6, No. 2, pp: 59-76.
9
Lorry, R., 1988. Growth, moulting and reproduction. Freshwater crayfish: biology, management and exploitation. pp: 83-113.
10
Paillisson, J.M.; Soudieux, A. and Damien, J.P., 2011. Capture efficiency and size selectivity of sampling gears targeting red-swamp crayfish in several freshwater habitats. Knowl. Managt. Aquatic Ecosyst. Vol. 401, No. 6.
11
Miller, J.R., 1990. Effectiveness of Crab and Lobster Traps. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 47, No. 6, pp: 1228-1251.
12
Skurdal, J. and Taugbol, T., 2002. Astacus in biology of freshwater crayfish (ed: Holdisch). Blackwell sciences, Londan, UK. pp: 467-503.
13
Sturges, H.A., 1926. The Choice of a Class Interval. Journal of the American Statistical Association. Vol. 21, pp: 65-66.
14
White, T.F., 1987. A Fisheries monitoring system for the Islamic Republic of Iran. IRA/83/013. FAO, Rome, Italy. 56 P.
15
Yüksel, F.; Demirol, F. and Gündüz. F., 2013. Leslie Population Estimation for Turkish Crayfish (Astacus leptodactylus Esch., 1823) in the Keban Dam Lake, Turkey. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 13, pp: 835-839.
16
ORIGINAL_ARTICLE
ارزشگذاری اقتصادی کارکردهای مصرفی (مستقیم و غیرمستقیم) منابع محیط زیستی تالاب بینالمللی خلیج گواتر و خور باهو
تالاب بینالمللی خلیج گواتر و خور باهو به دلیل وسعت زیاد، دارا بودن تنوع زیستی بالای جانوری و گیاهی نظیر وجود جنگلهای حرا، تمساح پوزهکوتاه (گاندو) و غیره و ویژگیهای کلی آنها یکی از مهمترین زیستگاهها برای بسیاری از جانداران خشکی زی و آبزی محسوب میشوند. این مطالعه باهدف ارزشگذاری اقتصادی کارکردها، کالاها و خدمات مصرفی مستقیم و غیرمستقیم منابع محیط زیستی تالاب بینالمللی خلیج گواتر و خور باهو در سال 1395 صورت گرفت. با استفاده از روش نمونهگیری تصادفی، تعداد 384 پرسشنامه از ساکنان منطقه جمعآوری شد. نتایج این بررسی نشان میدهد که ارزش اقتصادی کل سالانه خدمات مصرفی مستقیم تالاب بینالمللی خلیج گواتر و خورباهو معادل 1/8 میلیارد ریال هست. ارزش اقتصادی کل سالانه خدمات مصرفی غیرمستقیم معادل 21/671 میلیارد ریال برآورد شد. ارزش حفاظتی تالاب براساس پاسخ مصاحبهشوندگان به سؤالات پرسشنامه معادل 116435445 ریال برآورد گردید. مجموع ارزش برآوردی سالیانه خدمات مصرفی مستقیم و غیرمستقیم تالاب بینالمللی خلیج گواتر و خور باهو معادل 21/672 میلیارد ریال محاسبه شد. نتایج نشان داد که تالاب بینالمللی خلیج گواتر و خور باهو ارزش اقتصادی کاملاً مهم و قابلتوجهی داشته که این ارزشها برای تصمیمگیرندگان و برنامه ریزان، شرایطی و موقعیتهایی را میتواند فراهم کند تا با برنامهریزی مدیریتی صحیح از کیفیت تالاب و منابع آن حمایت نمایند.
http://www.aejournal.ir/article_100233_f8a4713835fdf6c080f23b7703b5d6bb.pdf
2019-09-23
293
302
ارزشگذاری اقتصادی منابع محیط زیستی
تالاب
خلیج گواتر و خور باهو
قیمت بازار
تمایل به پرداخت
محمود
سینایی
oceanography.sina@gmail.com
1
گروه شیلات، واحد چابهار، دانشگاه آزاد اسلامی، چابهار، ایران
LEAD_AUTHOR
اشرفعلی
حسینی
ash35552@yahoo.com
2
اداره حفاظت محیط زیست شهرستان چابهار، چابهار، ایران
AUTHOR
سمانه
دلیر
s.dalirboostan@gmail.com
3
گروه محیط زیست، دانشگاه پیام نور، واحد ری، ایران
AUTHOR
امیرنژاد، ح.؛ رفیعی، ح. و اتقایی، م.، 1389. برآورد ارزش حفاظتی منابع محیطی (مطالعه موردی: تالاب بینالمللی میانکاله). فصلنامه محیط شناسی. سال 36، دوره 53، صفحات 89 تا 98.
1
جعفری نژاد، م.؛فرهنگی، م. و خانپور، ف.، 1391. ارزشگذاری اقتصادی مواهب زیست محیطی تالاب بینالمللی گمیشان به روش مشروط برای تعیین کاربردهای حفاظتی. مجله حفاظت و بهرهبرداری از منابع طبیعی. جلد 1، شماره 1، صفحات 6 تا 13.
2
خداوردی زاده، م. و خلیلیان، ص.، 1391. کاربرد AHP بهمنظور تمایز ارزشهای مصرفی و غیرمصرفی تالابها (مطالعه موردی: تالاب قوریگل). فصلنامه علمی محیط زیست. دوره 53، صفحات 91 تا 101.
3
خداوردی زاده، م.؛خلیلیان، ص.؛حیاتی، ب. و پیشبهار، ا.، 1393. برآورد ارزش پولی کارکردها و خدمات منطقه حفاظتشده مراکان با استفاده از روش آزمون انتخاب. دوره 3، شماره 10، صفحات 267 تا 290.
4
دانهکار، ا.، 1385. شناسایی و پهنهبندی مناطق حساس ساحلی استان سیستان و بلوچستان. اداره کل منابع طبیعی استان سیستان و بلوچستان. 258صفحه.
5
فتاحی، ا. و فتح زاده، ع.، 1390. ارزشگذاری حفاظتی حوزههای آبخیز با استفاده از روش ارزشگذاری مشروط (مطالعه موردی: تالاب گمیشان). مجله علمی پژوهشی علوم و مهندسى آبخیزدارى ایران. سال 5، شماره 1، صفحات 134 تا 152.
6
عباس ور، م.؛ عابدی، ز.؛ احمدیان، ا. و ظفری، ف.، 1392. ارزشگذاری اقتصادی کارکردهای بازاری منابع زیستمحیطی دریاچه ارژن- پریشان با تأکید بر گونههای آبزی. علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 15، شماره 1، صفحات 96 تا 101.
7
مافی، غ.؛ یارعلی، د. و یارعلی، ن.، 1388. ارزشگذاری تفرجگاهی تالاب بینالمللی چغاخور با استفاده از روش هزینه سفر منطقهای. مجله محیط شناسی. دوره 50، صفحات 45 تا 54.
8
محمودی، ن.؛شیرزادی لسکوکلایه، س. و صبوحی صابونی، م.، 1389. برآورد ارزش تفرجگاهی تالاب انزلی با بهکارگیری روش ارزیابی مشروط. محیط شناسی. دوره 36، شماره 4، صفحات51 تا 58.
9
منتظرحجت، ا.؛بهزاد، م. و قربان نژاد، م.، 1393. ارزشگذاری خدمات استفادهای تالاب شادگان. فصلنامه اقتصاد مقداری (بررسیهای اقتصادی سابق). دوره 9، شماره 1، صفحات 41 تا 73.
10
مهندسان مشاور زیست انرژی چابهار. 1395. پروژه تعیین نیاز آبی تالاب بینالمللی خلیج گواتر و خور باهو. اداره کل حفاظت محیط زیست استان سیستان و بلوچستان.
11
Andreopoulos, D.; Damigos, D.; Comiti, F. and Fischer, C., 2015. Estimating the non market benefits of climate change adaptation of river ecosystem services: A choice experiment application in the Aoos basin, Greece. Environmental science and policy. Vol. 54, pp: 92-103.
12
Barbier, E.B.; Acreman, M. and Knowler. D., 2000. Economic Valuation of Wetlands, A Guide for Policy Makers and Planners. Ramsar Convention Bureau, Gland, Switzerland.
13
Lallan, P., 2001. Economic Valuation of Ecological Functions and Benefits: A Case Study of Wetland Ecosystems Along the Yamuna River Corridors of Delhi Region, Department of Business Economics, university of Delhi Institute of Economic Growth, Delhi; and Center for Environmental Management of Degraded Ecosystems, University of Delhi.
14
Newell, L.W. and Swallow, S.K., 2013. Real-payment choice experiments: Valuing forested wetlands and spatial attributes within a landscape context. Ecological Economics. Vol. 92, pp: 37-47.
15
Ramsar Convention Bureau. 1971. Appendix 7, Ramsar Wetland Definition, Classification and Criteria for Internationally Important Wetlands. Ramsar, Iran.
16
Suparmoko, M., 2008. Economic valueation for environmental goods and services (Market price method), Regional Training Workshop on The Economic Valuation of the Goods and Services of Coastal Habitats.
17
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی ترکیب فصلی، فراوانی و تنوع زیستی جوامع کفزیان در رودخانه گرگان رود، استان گلستان
بررسی سالیانه فون کفزیان موجود در یک رودخانه می تواند اطلاعات دقیقی را درخصوص میزان آلودگی در اختیار سایر محققین قرار دهد. با توجه به ورود پساب های شهری و کشاورزی به رودخانه گرگان رود، هدف از این مطالعه بررسی ترکیب، فراوانی و تنوع زیستی جوامع کفزیان در این رودخانه به عنوان بخشی از سطوح غذایی این اکوسیستم آبی بسیار پراهمیت می باشد. این مطالعه در طی یک دوره یک ساله بین سال های 89-1388 در 5 ایستگاه مختلف و به صورت ماهیانه انجام گردید. نمونه برداری با استفاده از نمونه بردار سوربر (با مساحت 1600 سانتی مترمربع) با 3 تکرار انجام گردید. بر این اساس، 3 شاخه و 16 جنس شناسایی شدند که شاخه های کرم های حلقوی، بندپایان و نرم تنان به ترتیب با 3، 4 و 9 جنس دارای بیش ترین جنس بودند. بیش ترین میزان تنوع با میانگین فصلی 2/67 و 0/86 در فصل پاییز و کم ترین میزان تنوع با مقادیر 2/16 و 0/81 در فصل تابستان به دست آمد. بر مبنای مقایسه جوامع کفزی، میانگین تراکم نهایی جمعـیت کفـزیان فـصول مختلف در بین ایستگاه های مختلف دارای اختلاف معنی دار بود (0/05>P)، ولی میانگین تراکم نهایی فصول مختلف با همدیگر دارای اختلاف معنی دار نداشت (0/05<P). برطبق این نتایج بین فاکتورهای دما، اکسیژن محلول و درجه اسیدیته ایستگاه های مختلف هیچ اختلاف معنی داری وجود نداشت (0/05<P)، ولی فاکتور عمق در بین ایستگاه های مختلف دارای اختلاف معنی دار بود (0/05>P). هم چنین آنالیز همبستگی فاکتورهای مختلف آب و تـراکم جمعیت کفزیان ایستگاه های مختلف حاکی از عدم وجود رابطه همبستگی معنی دار بود (0/05>P).
http://www.aejournal.ir/article_100202_442a717eefa39128a3ed48f59b85d4c2.pdf
2019-09-23
303
310
تراکم
تنوع زیستی
کفزیان
رودخانه گرگان رود
استان گلستان
مهدی
عادلی
mehdi.adeli1361@chmail.ir
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، واحد آزادشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، آزادشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
سید علی اکبر
هدایتی
hedayati@gau.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
مجتبی
پولادی
mojtabafishery1987@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
زینب
عادلی
adeli.z@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، واحد آزادشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، آزادشهر، ایران
AUTHOR
جرجـانی، س.؛ قلیچـی، ا. و اکرمـی، ر.، 1387 .ارزیابی شاخص زیستی آلودگی و فون کفزیان نهر مادرسو پارک ملی گلستان. مجله شیلات. سال 2، شماره 1، صفحات 41 تا 52.
1
خاتمی، ه.، 1383. بی مهرگان کفزی آب های شیرین (کلید شناسایی و حساسیت به آلودگی). انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. چاپ اول. 205 صفحه.
2
زرگر، م.، 1384. راهنمای جامع SPSS همراه با تمرین های علمی و کاربردی. انتشارات بهینه، تهران. 556 صفحه.
3
سقلی، م.؛ یحیوی، م. و یلقی، س.، 1390. بررسی توزیع و تراکم ماکروبنتوزها در مزارع پرورش میگوی سفید غربی (Litopenaeus vannamei) در منطقه گمیشان استان گلستان. مجله آبزیان و شیلات. دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس. سال 2، شماره 8، صفحات 29 تا 37.
4
شاپوری، م. و ذوالریاستین، ن.، 1390 . هیدروبیولوژی. انتشارات حافظ برتراندیشه. 150 صفحه.
5
صابری، س.ا.؛ جرجانی، س.؛ میرا، س.م. و قلیچی، ا.، 1390. تعیین فون بنتیک خرمارود شهرستان آزادشهر. مجله علوم زیستی واحد لاهیجان. سال 5، شماره 4، صفحات 109 تا 119.
6
طوسی، آ.؛ شجیعی، ه.؛ قلیچی، ا. و صابری، س.ا.، 1390. ارزیابی کیفیت 6 چشمه شمال شهرستان دامغان براساس تنوع درشت بی مهرگان کفزی. مجله شیلات دانشگاه آزاد اسلامی واحد آزادشهر. سال 5، شماره 4، صفحات 1 تا 16.
7
عباس پور، ر.؛ علیزاده ثابت، ح.ر.؛ هدایتی فرد، م. و مسگران کریمی، ج.، 1390. ارزیابی زیستی رودخانه چشمه کیل تنکابن (استان مازندران) با استفاده از شاخص های زیستی، ساختار جمعیتی و زیتودهای درشت بی مهرگان آبزی. مجله آبزیان و شیلات. سال 2، شماره 8، صفحات 63 تا 75.
8
عباس پور، ر.؛ علیزاده ثابت، ح.ر.؛ هدایتی فرد، م. و مسگران کریمی، ج.، 1392. ارزیابی کیفی آب رودخانه چشمه کیله با استفاده از جوامع درشت بی مهرگان کفزی و فاکتورهای فیزیکوشیمیایی آب. نشریه توسعه آبزی پروری. سال 7، شماره 4، صفحات 43 تا 56.
9
قانع ساسان سرایی، ا.، 1383. شناسایی ساختار جمعیت ماکروبنتوزهای رودخانه چافرود در اسـتان گـیلان بـا توجه به برخی عوامل کیفی آب (در محدوده روسـتای اورمان مـلال). پایـان نامـه کارشناسـی ارشـد. دانشـگاه تربیت مدرس. 98 صفحه.
10
قانع، ا.، 1392. ترکیب جمعیت ماکروبنتوزها و توسعه آبزی پروری در رودخانه زاینده رود. نشریه توسعه آبزی پروری. سال 7، شماره 4، صفحات 57 تا 65.
11
کمالی، م.، 1393. مروری بر روش های نمونه برداری از بنتوزها. کنفرانس بین المللی یافته های نوین در علوم کشاوزری. منابع طبیعی و محیط زیست. تهران. صفحات 1 تا 7.
12
مهردادی، ن.؛ خاکپور، ا.؛ سروش، م. و خزاعی، ن.، 1389. ارزیابی زیستی رودخانه گرگان رود با استفاده از ساختار کفزیان. چهارمین همایش تخصصی مهندسی محیط زیست.
13
موسوی ده موردی، ل.؛ روشن، آ. و نیکو، س.، 1389، شناسایی و بررسی تنوع گونه های نرم تنان رسوبات تالاب شادگان. مجله تالاب، دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 2، شماره 3، صفحات 3 تا 13.
14
موسوی ندوشن، ر.؛ سامان پژوه، م.؛ عمادی، ح. و فاطمی، س.م.ر.، 1390، ساختار جمعیت موجودات ماکروبنتوز در دریاچه نئور اردبیل. مجله علمی شیلات ایران. سال 20، شماره 3، صفحات 129 تا 142.
15
میررسولی، ا. و قربانی، ر.، 1390. ارزیابی زیستی رودخانه زرین گل (استان گلستان) با استفاده از ساختار جمعیت ماکروبنتوزها. نشریه شیلات, مجله منابع طبیعی ایران. سال 64، شماره 4، صفحات 357 تا 369.
16
نوان مقصودی، م.، 1391. بررسی کفزیان رودخانه قزل اوزن استان زنجان. مجله علمی شیلات ایران. سال 21، شماره 4، صفحات 125 تا 138.
17
American Public Health Association (APHA). 1998. Standard methods for the examination of water and wastewater. 20th edition. New York.
18
Barbour, M.T.;Plafkin, J.L.; Bradley, B.P.; Graves, C.G.and Wissemann, R.W., 1996. Rapid bioassessment protocols for use in streams and wadeable river: periphyton, benthic invertebrates, and fish. 2nd edition EPA. Washington DC. 408 P.
19
Farhangi, M. and Teymori Yanseri, M., 2012. Identification macroinvertebrates (benthic) of Mohammad Abad River (Golestan Province). Journal of Animal Environment. Vol. 4, No. 2, pp: 51-56.
20
Karimian, E.; Javanshir, A. and Ghorbani, R., 2009. Determination of biotic indices of water quality in Gheshlagh River, Sanandaj, Iran. Journal Agriculture Science Natural Resources. Vol. 16, No. 2, pp: 99-109.
21
Mellanby, H., 1963. Animal life in freshwater, Methuen and Co Ltd. Landon UK. Vol. 308, pp: 55-69.
22
Pennak, R.L., 1989. Freshwater of the United States. 3rd ed. Wiley. New York. 28 P.
23
Sarkar, A., 2012. Bioindicators of river Yamuna at Agra. International Journal of Geology, Earth and Environmental Sciences. Vol. 2, No. 1, pp: 16-21.
24
Taylor, B.R., 1997. Technical Evaluation on Methods for Benthic Invertebrates Data Analysis and Interpretation. AETE Project 2.1.3 prepared for Canada Center for Mineral and Energy Technology. Ottawa. Ontario. 93 P.
25
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه پراکنش و فراوانی جوامع مروپلانکتون در جنوب دریای خزر، منطقه بندرانزلی
مطالعه ساختار مروپلانکتون، تغییرات فراوانی و تعیین زمان شکوفائی آن ها در سال ها و فصول مختلف در جنوب دریای خزر در 4 ایستگاه واقع در محدوده بندرانزلی بررسی و ارزیابی شد، نمونه ها به صورت فصلی از اعماق 5، 10، 20 و 50 متر طی سال های 1375 و 1380 تا 1392 گرفته شد. تعداد 15 گروه مروپلانکتونی شناسائی گردیدند. گروه های غالب مروپلانکتون شامل لاروهای Bivalvia ، Balanus improvises و diversicolorNereis بوده اند. فراوانی لارو دوکفه ای در سال 1375 افزایش بسیار نامتعارف داشت، به طوری که میانگین فراوانی آن حد 26000 عدد در مترمکعب رسید. فراوانی بارناکل تغییراتی را بعد از شکوفائی شانه دار بین سال های 1380 تا 1392 داشته است، به طوری که میزان فراوانی بارناکل بین 98 و 4700 عدد در مترمکعب در سال 1380 و 1389 در نوسان بود. هم چنین شکوفائی فصلی بارناکل در بهار با میزان 3100 عدد در مترمکعب بوده است. فراوانی لارو نرئیس بین 1500 تا 60 عدد در متر مکعب به ترتیب در سال های 1380 و 1385 متغییر بوده است و در سال های قبل از شکوفائی شانه دار (1375) مشاهده نشد. شکوفائی فصلی لارو نرئیس در تابستان با میزان فراوانی 500 عدد در متر مکعب ثبت شد. بیش ترین پراکنش عمودی مروپلانکتون در عمق 50 متر در لایه های سطحی آب بود. یافته ها نشان داد، فراوانی مروپلانکتون از ساحل به سمت دریا کاهش می یابد. احتمالاً عوامل محیطی و گونه های غیربومی دلیل مهم در پراکنش زمانی و مکانی مروپلانکتون در جنوب دریای خزر باشد.
http://www.aejournal.ir/article_99719_0eb36577e3bc1b5cc58037793e0b3855.pdf
2019-09-23
311
318
مروپلانکتون
پراکنش
فراوانی
دریای خزر
بندرانزلی
سیامک
باقری
siamakbp@gmail.com
1
پژوهشکده آبزیپروری آبهای داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
LEAD_AUTHOR
روحی، ا.، 1386. بررسی جامع اکولوژیک امکان کنترل جمعیت شانه دار مهاجم دریای خزر، فعالیت بررسی پراکنش و فراوانی شانه دار در سواحل ایرانی دریای خزر. موسسه تحقیقات شیلات ایران. پژوهشکده اکولوژی دریای خزر. 60 صفحه.
1
روشن طبری، م.؛ تکمیلیان، ک.؛ سبک آرا، ج.؛ روحی، ا. و رستمیان. م.، 1382. بررسی پراکنش زئوپلانکتون ها در حوضه جنوبی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران.دوره 12، شماره 3، صفحات 83 تا 96.
2
APHA. 2005. Standard methods for the examination of water and wastewater, 21th ed. Washington, D.C: American public health association publication. 1193 P.
3
Bagheri, S., 2006. Study of stomach contents of ctenophore Mnemiopsis leidyi in Iranian waters of Caspian Sea (Guilan waters). Iran Journal of Fisheries Sciences. Vol. 14, No. 4, pp: 1-16.
4
Bagheri, S.; Mansor, M.; Makaremi, M.; Mirzajani A.R.; Babaei, H.; Negarestan, H. and Wan Maznah, W.O., 2010. Distribution and composition of phytoplankton in the southwestern Caspian Sea during 2001-2002, a comparison with evious surveys. World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 2, No. 5, pp: 416-426.
5
Bagheri, S.; Mansor, M.; Marzieh, M.; Sabkara, J.; Mirzajani, A.; Khodaparast, S.H.; Negaresatan, H.; Wan Maznah, W.O.; Ghandi, A., Z. and Khalilpour, A., 2011. Fluctuations of Phytoplankton Community in the Coastal waters of Caspian Sea in 2006. American Journal of Applied Sciences. Vol. 8, No. 12, pp: 1328-1336.
6
Bagheri, S., 2012. Ecological assessment of plankton and effect of alien species in the south western Caspian Sea. PhD thesis. Universiti Sains Malaysia, Penang, Malaysia. 233 p.
7
Bagheri, S.; Niermann, U.; Sabkara, J.; Mirzajani, A. and Babaei, H., 2012. State of Mnemiopsis leidyi (Ctenophora: Lobata) and mesozooplankton in Iranian waters of the Caspian Sea during 2008 in comparison with previous surveys. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 11, No. 4, pp: 732-754.
8
Bagheri, S.; Niermann, U.; Mansor, M. and Yeok, S.W., 2014. Biodiversity, distribution and abundance of zooplankton in the Iranian waters of the Caspian Sea off Anzali during 1996-2010. The Journal of the Marine Biological Association of the UnitedKingdom. Vol. 94, No. 1, pp: 129-140.
9
Bagirov, R.M., 1989. The Azov and Black Sea species introduced to the Caspian benthos and biofouling. Doctoral dissertation, University of Baku. 158 p.
10
Birshtain, Y.A.; Vinogradova, L.G.; Kondakov, N.N.; Koon, M.S.; Astakhova, T.V. and Romanova, N.N., 1968. Invertebrait Atlas Caspian Sea. Moscova: Industry food publisher. 610 p.
11
Dumont, H.J., 1998. The Caspian Lake: History, biota, structure, and function. Limnol Oceanogr. Vol. 43, pp: 44-52.
12
Fallahi, M., 1993. Plankton survey in the southern part of the Caspian Sea. Iran Journal of Fisheries Sciences. Vol. 4, pp: 19-38.
13
Harris, R.P.; Wiebe, P.H.; Lenz, J. and Skjoldal, H.R., 2000. Zooplankton methodology manual. Printed in Great Britain: Academic Press. 684 p.
14
Hosseini, A., 2011. Hydrology and hydrobiology of the southern Caspian Sea. Iraninan Fisheries Research Organization. Tehran, Iran: IFRO publisher. 296 p.
15
IFGO. 2003. Culture of geography Iran Rivers and the Caspian Sea catchment. Tehran, Iran: Iranian force power geography organization publisher. 312 p.
16
Jafari, N., 2009. Ecological integrity of wetland, their functions and sustainable use. Journal of Ecology and Natural Environmen. Vol. 1, No. 3, pp: 45-54.
17
Kamakin, A.M. and Khodorevskaya, R.P., 2018. Impact of the Alien Species Mnemiopsis leidyi A. Agassiz, 1865 on Fish of the Caspian Sea. Inland Water Biology. Vol. 11, No. 2, pp: 173-178.
18
Kasimov, A., 2000. Methods of monitoring in Caspian Sea. Baku, Azerbaijan: QAPP–POLIQRAF. 57 p.
19
Kideys, A.E.; Roohi, A. and Bagheri, S., 2001. Monitoring Mnemiopsis leidyi in the Caspian Sea waters of Iran. Final report prepared for the Caspian environment programme, Baku, Azerbaijan: CEP publisher. 15 p.
20
Kosarev, A.N. and Yablonskaya, E.A., 1994. The Caspian Sea. Russia: SPB Academic publisher. 259 p.
21
Laloei, F., 2002. Caspian Sea investigation of hydrology and hydrobiology (Iranian coast, 10 m depth). Iranian Fisheries Research Organization. Tehran, Iran: IFRO publisher. 392 p.
22
Mirzajani, A.; Hamidian, A.; Bagheri, S. and Karami, M., 2016. Possible effect of Balanus improvisus on Cerastoderma glaucum distribution in the south-western Caspian Sea. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. Vol. 96, No. 5, pp: 1031-1040.
23
Nasrollahzadeh, H.S., 2009. The study of Nodularia spumigena bloom event in the Southern Caspian Sea. Applied Ecology and Environmental Research. Vol. 9, No. 2, pp: 141-155.
24
Pourang, N.; Eslami, F.; Nasrollahzadeh Saravi, H. and Fazli, H., 2016. Strong biopollution in the southern Caspian Sea: the comb jelly Mnemiopsis leidyi case study. Biological Invasions. Vol. 18, No. 8, pp: 2403-2414.
25
Roohi, A., 1993. Study of distribution and seasonal of Copepoda in the southern Caspian Sea. Iran Journal of Fisheries Sciences. Vol. 3, No. 3, pp: 53-56.
26
Roohi, A.; Yasin, Z.; Kideys, A.E.; Hwai, A.T.; Khanari, A.G. and Eker-Develi, E., 2008. Impact of a new invasive ctenophore (Mnemiopsis leidyi) on the zooplankton community of the Southern Caspian Sea. Marine Ecology. Vol. 29, No. 4, pp: 421-434.
27
Roohi, A.; Kideys, A.E.; Sajjadi, A.; Hashemian, A.; Pourgholam, R.; Fazli, H.; Khanari, A.G. and Eker, E., 2010. Changes in biodiversity of phytoplankton, zooplankton, fishes and macrobenthos in the Southern Caspian Sea after the invasion of the ctenophore Mnemiopsis leidyi. Biological Invasions. Vol. 12, No. 7, pp: 2343-2361.
28
Ruttner-Kolisko, A., 1974. Plankton Rotifera biology and taxonomy. Stuttgardt, Germany: E. Schweizerbart, Verlagsbuchhandlung. 146 p.
29
Sabkara, J. and Makaremi, M., 2007. Identification of Cladocera in the Caspian Sea. Iran Journal of Fisheries Sciences. Vol. 15, No. 2, pp: 1-14.
30
UNEP. 2006. The Caspian Sea, GIWA Regional Assessment 23. University of Kalmar, Kalmar, Sweden. 26 p.
31
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر بوم شناختی سازه موج شکن بندرانزلی بر تنوع و فراوانی درشت بی مهرگان
به منظور بررسی تاثیر موج شکن بندرانزلی بر روی تنوع و فراوانی درشت بی مهرگان، 12 ایستگاه در دوسوی موج شکن در قسمت دیواره و بستر مجاور آن درنظر گرفته شد. نمونه برداری از آبان 1396 تا مرداد 1397 به صورت فصلی انجام گرفت. نتایج اولیه حضور گروه های جانوری متفاوت در بستر دریا و دیواره سنگی موج شکن و در دو سوی موج شکن را نشان داد. در ایستگاه های بستری، نرم تن دوکفه ای Cerastoderma glaucum با میانگین فراوانی 511/9±344/1 عدد در مترمربع و سخت پوست Stenogammarus compersus با فراوانی 55/9±77/7 عدد در مترمربع فقط در سمت دریا دیده شدند. کرم پرتار Streblospio gynobranchiata با فراوانی 42/5±33/3 عدد در مترمربع فقط در داخل اسکله یافت شد. از درشت بی مهرگان روی دیواره، نرم تنان دوکفه ای Mytilaster lineatus و Mytilopsis leucophoeata به ترتیب درسمت دریا و درون اسکله فراوان ترین بودند و تغییرات فصلی در فراوانی آن ها دیده نشد. دوجورپای Melita mirzajanii به تعداد 1877±4106 و کرم پرتار Hediste diversicolor با 110±495 عدد در مترمربع بیش ترین فراوانی را روی دیواره موج شکن داشتند. مقادیر میانگین شاخص های تنوع شانون-وینر، سیمپسون و مارگالف در بستر دریا و دیواره سنگی موج شکن طی فصول مختلف تفاوت معنی دار نداشتند (0/05<p). تنوع درشت بی مهرگان سمت دریا در مقایسه با داخل اسکله بیش تر بوده و این تنوع روی دیواره بیش تر از بستر دریا بوده است. نتیجه حاکی از آن است که ایجاد سازه های مصنوعی هم چون موج شکن ها در افزایش تنوع درشت بی مهرگان نقش به سزایی خواهند داشت.
http://www.aejournal.ir/article_99718_6051ef52565ea749619c2ad02ac575a4.pdf
2019-09-23
319
326
بندرانزلی
موج شکن
درشت بی مهرگان
تنوع
فراوانی
فریبرز
صیاداوغلی
fariborz.sayyadoghly@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده فنی مهندسی و علوم پایه، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
سکینه
علی جان پور
alijanpour@gonbad.ac.ir
2
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده فنی مهندسی و علوم پایه، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
رحمان
پاتیمار
rpatimar@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
نادر
شعبانی پور
shabani@guilan.ac.ir
4
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه گیلان، رشت، ایران
AUTHOR
علیرضا
میرزاجانی
armirzajani@gmail.com
5
پژوهشکده آبزیپروری آبهای داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
LEAD_AUTHOR
ترابی جفرودی، ح.؛ تقوی، ح. و رحیمی بشر، م.ر.، 1394. الگوی توزیع و پراکنش کشتی چسب مهاجم دریای خزر Amphibalanus improvises در سواحل سنگی حوضه جنوبی خزر. مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 5، شماره 2، صفحات 57 تا 65.
1
حسینی، س.ع.، 1389. گزارش هیدرولوژی و هیدروبیولوژی حوضه جنوبی دریای خزر (1375-1376). سازمان تحقیقات و آموزش کشاورزی. موسسه تحقیقات شیلات ایران. شماره ثبت 402/89. 296 صفحه.
2
خیرآبادی، ن. و استکانی، س.، 1396. شناسایی گونه ای و بررسی اکولوژیکی خرچنگ در سواحل دریای خزر. مجله زیست شناسی جانوری تجربی. سال 6، شماره 3، صفحات 59 تا 67.
3
طاهری، م.؛ سیف آبادی س.ج. و یزدانی فشتمی، م.، 1384. خصوصیات ریخت شناسی و زیستی کرم پرتار، Streblospio gynobranchiata، در ساحل نور- دریای خزر. مجله علوم و فنون دریایی ایران. دوره 4، شماره 3-4، صفحات 23 تا 29.
4
عبدالملکی، ش.، 1382. پراکنش و پویایی جمعیت و ارزیابی میگوهای دریای خزر، گونه های جنس Palaemon در سواحل استان گیلان. رساله دکتری دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات. 252 صفحه.
5
فامیل مدیران،پ.، 1393. فناوری سازه های دریایی. آیین نامه طراحی موج شکن های سکویی شکل پذیر تالیف سازمان بنادر و دریانوردی ایران. Civitech.ir
6
قاسم اف، آ.گ.، 1992. اکولوژی دریای خزر. ترجمه ا. شریعتی 1378. موسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران. 269 صفحه.
7
لالویی، 1383. پروژه هیدرولوژوی و هیدروبیولوژی و آلودگیهای زیست محیطی اعماق کمتر از 10 متر حوضه جنوبی دریای خزر. سازمان تحقیقات و آموزش کشاورزی موسسه تحقیقات شیلات ایران. شماره ثبت 494/83.
8
مائی سیو، پ.آ. و فیلاتوآ، ز.آ.، 1985. جانوران و تولیدات زیستی دریای خزر، ترجمه ابولقاسم شریعتی، موسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران. 405 صفحه.
9
محمدنژاد، ح. و حبیب حکیم زاده، م.، 1395. بررسی عددی رسوب گذاری ناشی از موج و جریان در بندرانزلی با در نظر گرفتن توسعه بازوهای موج شکن. نشریه صنعت حمل و نقل دریایی. سال 2، شماره 2، صفحات 13 تا 22.
10
مهندسین مشاوره سازه پردازی ایران. 1395. ساخت دایک ها و موج شکن های بندرانزلی. بولتن روابط عمومی اداره کل بنادر و کشتیرانی استان گیلان. 4 صفحه.
11
میرزاجانی، ع.، 1396. بررسی وضعیت بیولوژیکی موجود در محدوده اسکله جدید بندرانزلی. پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی. شماره ثبت51831. 66 صفحه.
12
میرزاجانی، ع.؛ قانع، ا.؛ خداپرست، ح.؛ قربان زاده زعفرانی، ق. و صدیقی سوادکوهی، ا.، 1393. مطالعه مصب رودخانه های منتهی به دریای خزر در استان گیلان بر اساس جوامع کفزیان. مجله زیست طبیعی منابع طبیعی ایران. دوره 67، شماره 4، صفحات 461 تا 474.
13
میرزاجانی، ع.؛ یوسف زاد، ا.؛ صیادرحیم، م.؛ زحمتکش، ی.؛ قربان زاده زعفرانی، ق. و صدیقی سوادکوهی، ا.، 1394. شناسایی و فراوانی کفزیان مصب رودخانه های منتهی به دریای خزر در استان گیلان. مجله علمی شیلات ایران. سال 24، شماره 3، صفحات 1 تا 12.
14
نگارستان، ح.؛ هاشمی مطلق، م. و نجات خواه، پ.، 1395. شناسایی و بررسی مجموعه های ماکروبنتوز سواحل جنوب غربی دریای مازندران (گیلان). مجله پایداری،توسعه و محیط زیست. دوره 3، شماره 2 ، صفحات 12 تا 30.
15
Aggrey-Fynn, J.; Galyuon, I. and Aheto, D.W., 2011. Assessment of the environmental conditions and benethic macro-invertebrate communities in two coastal lagoons in Ghana. Annals of Biological Research. Vol. 2, No. 5, pp: 413-424.
16
Birstein, J.A. and Romanova, N.N., 1968. Atlas Bespozvo nochnykh Kaspiiskogo Moria. Pishchevaia Promyshle-nost, Moscow.
17
Boyle, Jr.T.; Keith, D. and Pfau, R., 2010. Occurrence, reproduction, and population genetics of the estuarine mud crab, Rhithropanopeus harrisii (Gould) (Decapoda, Panopidae) in Texas freshwater reservoirs. Crustaceana. Vol. 83, No. 4, pp: 493-505.
18
Goncalves, F.; Ribeiro, R. and Soares, A.M.V.M., 1995. Laboratory study of effects of temperature and salinity on survival and larval development of a population of Rhithropanopeus harrisii from the Mondego River estuary, Portugal. Marine Biology. Vol. 121, No. 4, pp: 639-645.
19
Heiler, K.C.; Nahavandi, N. and Albrecht, C., 2010. A new invasion into an ancient lake-the invasion history of the dreissenid mussel Mytilopsis leucophaeata (Conrad, 1831) and its first record in the Caspian Sea. Malacologia. Vol. 53, No. 1, pp: 185-192.
20
Hunt, H. and Scheilbling, R.E., 1996. Physical and biological factors influencing mussel settlement on a wave exposed rocky shore. Marine Ecology Progress Series. Vol.142:135-145.
21
Krapp-Schickel, T. and Sket B., 2015. Melita mirzajanii n. sp. (Crustacea: Amphipoda: Melitidae), a puzzling new member of the Caspian fauna. Zootaxa. Vol. 3948, No. 2, pp: 248-262.
22
Krebs, C.J., 1989. Ecological methodology. New York: Harper & Row.
23
Laine, A.O.; Mattila, J. and Lehikoinen, A., 2006. First record of the brackish water dreissenid bivalve Mytilopsis leucophaeata in the northern Baltic Sea. Aquatic Invasions.
24
Lee, T.H. and Li, M.H., 2013. International assemblages on artificial structures and natural rocky habitats on Taiwan s north coast. Raffles Bulletin of Zoology. Vol. 61, No. 1.
25
Ludwig, J.A. and Reynolds, J.F., 1988. Statistical Ecology. John wily and sons, New York. 337 p.
26
Malinovskaya, L.V. and Zinchenko, T.D., 2010. Mytilaster lineatus (Gmelin): long-term dynamics, distribution of invasive mollusk in the Northern Caspian Sea. Russian Journal of Biological Invasions. Vol. 1, No. 4, pp: 288-295.
27
Martin, D.; Bertasi, F.; Colangelo, M.A.; de Vries, M.; Frost, M.; Hawkins, S.J.; Macpherson, E.; Moschella, P.S.; Satta, M.P.; Thompson, R.C. and Ceccherelli, V.U., 2005. Ecological impact of coastal defence structures on sediment and mobile fauna: evaluating and forecasting consequences of unavoidable modifications of native habitats. Coastal engineering. Vol. 52, No. 10-11, pp.1027-1051.
28
Milon, J.W., 1989. Artificial marine habitat characteristics and participation behavior by sport anglers & divers. Bulletin of Marine Science. Vol. 44, No. 2, pp: 853-862.
29
Mirzajani, A.; Hamidian, A.H.; Bagheri, S. and Karami, M., 2016. Possible effect of Balanus improvisus on Cerastoderma glaucum distribution in the south-western Caspian Sea. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. Vol. 96, No. 5, pp: 1031-1040.
30
Mirzajani, A.R. and Kiabi, B.H., 2000. Distribution and abundance of coastal Caspian Amphipoda [Crustacea] in Iran. Polskie Archiwum Hydrobiologii. Vol. 47, pp: 3-4.
31
Mirzajani, A.R. and Vonk, R., 2006. Spatial and temporal aspects of the lagoon cockle and its commensal amphipod in the southwestern Caspian Sea Zoology in the Middle East. Vol. 37, pp: 63-72.
32
Pourjomeh, F.; Shokri, M.R. and Kiabi, B., 2014. Do cement Boulders Mimic Natural Boulders for Macro Invertebrates in the Southern Caspian Sea? Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 14, pp: 155-164.
33
Rijn, L., 2013. Leovanrijn-sediment.com.
34
Roche, D.G. and Torchin, M.E., 2007. Established population of the North American Harris mud crab, Rhithropanopeus harrisii (Gould 1841) (Crustacea: Brachyura: Xanthidae) in the Panama Canal.
35
Seaby, R.M.H. and Henderson, P.A., 2007. SDR-IV. Pisces Conservation. Pisces Conservation Publisher.
36
Shorygin, A.A. and Karpevich, A.F., 1948. New introducers of the Caspian Sea and their significance in the biology of this reservoir. Krymizdat, Simferopol (in Russian).
37
Southward, A.J. and Orton, J.H., 1954. The effects of wave-action on the distribution and numbers of the commoner plants and animals living on the Plymouth breakwater. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. Vol. 33, No. 1, pp: 1-19.
38
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تاثیر مانسون بر تنوع زیستی زئوپلانکتون های سواحل شرقی چابهار (دریای مکران)
نقش و اهمیت زئوپلانکتون ها در زنجیره غذایی و هرم اکولوژیک اکوسیستم دریایی از جایگاه ویژه ای برخوردار است. هدف از این پژوهش، بررسی تاثیر مانسون بر تنوع زیستی زئوپلانکتون های سواحل شرقی چابهار می باشد. نمونه برداری از سواحل شرقی چابهار با استفاده از تور مخروطی زئوپلانکتون با چشمه 100 میکرون و با دهانه 30 سانتی متر به صورت کشش افقی، در 8 ایستگاه در مناطق خلیج چابهار، بریس و رمین طی 4 فصل از تابستان 1395 تا بهار 1396 انجام گرفت. با توجه به نتایج، رده پاروپایان 66/87 درصد از جمعیت زئوپلانکتونها را به خود اختصاص دادند. پس از رده پاروپایان، نرم تنان دوکفه ای (7/53 درصد)، سالپ سانان (6 درصد)، بیش ترین حضور و رده های پرتاران، سرطناب داران، استراکودا کم ترین حضور (در مجموع با 2/22 درصد) را در فصول مختلف نمونه برداری شامل شدند. بالاترین و پایینترین شاخص شانون به ترتیب در فصل پاییز (3) و بهار (0/99)، بالاترین و پایین ترین شاخص غالبیت به ترتیب در فصل پاییز و زمستان (0/95) و تابستان و بهار (0/94) و بالاترین و پایینترین شاخص یکنواختی به ترتیب در فصل پاییز و بهار (0/97) و تابستان (0/94) محاسبه شد. با توجه به نتایج حاصل از تحقیق، ساختار اجتماعات زئوپلانکتون های این منطقه تحت تأثیر تغییرات ناشی از بادهای مانسون و جریان های فراچاهنده ساحلی می باشد. چرخه تولید و نوسانات فصلی زئوپلانکتون ها بستگی به پاسخی دارد که محیط به این تغییرات می دهد. در نتیجه، هنگامی که موجودات زئوپلانکتونی در معرض اختلالات شدید (مانسون) قرار دارند، چند گونه به گونه غالب تبدیل می شوند و یکنواختی گونه ای کاهش یابند.
http://www.aejournal.ir/article_95814_b8547f955a1e8c06c45367a94ff0183d.pdf
2019-09-23
327
334
زئوپلانکتون
سواحل چابهار
مانسون
تنوع زیستی
مکران
مهران
لقمانی
loghmani_mehran@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
LEAD_AUTHOR
فاطمه
ذبیحی
samahir68@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
AUTHOR
گیلان
عطاران
gilan.attaran@gmail.com
3
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
AUTHOR
امینی یکتا،ف.؛آگاه،ه.؛آقاجان پور،ف.؛صالح،ا.؛جلیلی،م.؛حکمت آرا،م.؛صادقی،پ.؛واجدسمیعی،ج. و حمزه،م،ع.،1393. پراکنش ردهه ای بی مهرگان کفزی در مناطق زیر جزر و مدی خلیج چابهار و آب های اطراف با تأکید بر تأثیر عوامل محیطی. نشریه اقیانوس شناسی، دوره 18، شماره 5، صفحات 29 تا 37.
1
پولادی،م.؛ فرهادیان، ا. و وزیری زاده، ا.، 1392. ترکیب، فراوانی و زی تودة جامعة زئوپلانکتونی در مصب رودخانة حله، استان بوشهر، خلیج فارس. نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 66، شماره 3، صفحات 255 تا 270.
2
حقیقی،ح.،1374 .گزارش نهایی هیدرولوژی و هیدروبیولوژی خلیج چابهار. مرکز تحقیقات آب های دور چابهار. 160 صفحه.
3
رضایی، ا.؛ کاظمیان، م.؛ عوفی، ف. و شاپوری، م.، 1389. بررسی تنوع زئوپلانکتون های منتقل شده توسط آب توازن در بندرتجاری شهیدرجایی. مجله بیولوژی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 2، شماره 5، صفحات 67 تا 70.
4
سنجرانی، ا.؛ احمدی، م.ر.؛ کامرانی، ا.؛ ابراهیمی، م. و سنجرانی، م.، 1389. شناسایی زئوپلانکتون های سواحل ایرانی دریای عمان و تنگه هرمز و مقایسه آن ها در قبل و بعد از مانسون تابستانه با یکدیگر. مجله علمی آبزیان و شیلات. سال 1، شماره 1، صفحات 43 تا 53.
5
سنجرانی، م.، 1393. شناسائی و بررسی فراوانی راسته Calanoida از زیر رده پاروپایان در آب های ایرانی دریای عمان قبل و بعد از مانسون. مجله پژوهش های جانوری (مجله زیست شناسی ایران). جلد 27، شماره 21، صفحات 59 تا 70.
6
فلاحی کپورچالی،م.؛دهقان مدیسه،س.و اسلامی،ف.، 1382. گزارش پلانکتونی حوزه ایرانی خلیج فارس. پروژه هیدرولوژی و بیولوژی خلیج فارس. موسسه تحقیقات شیلات ایران.
7
لقمانی، م.؛ سواری، ا.؛ دوست شناس، ب.؛ ارچنگی، ب. و کبیری، ک.، 1395. بررسی اثر مانسون بر الگوهای تنوع زیستی پرتاران پهنه زیر جزر و مدی خلیج چابهار (دریای مکران). اقیانوس شناسی. سال 7، شماره 25، صفحات 13 تا 22.
8
لقمانی، م.، 1395. بررسی تغییرات تراکم پرتاران زیر جزر و مدی خلیج چابهار با تأکید بر نقش فلزات سنگین (مس و روی). مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 3، شماره 6، صفحات 10 تا 21.
9
نیکوئیان، ع.ر.،1377. بررسی تراکم پراکنش، تنوع و تولید ثانویه بیمهرگان کفزی (ماکروبنتوزها) در خلیج چابهار. پایان نامه دکتری بیولوژی دریا. دانشگاه آزاد واحد علوم و تحقیقات. 187 صفحه.
10
Baker, M.; Hosny, C.F.H. and Al-Suwailem, A.M., 2006. Contribution to the study of zooplankton diversity, abundance and biomass in Saudi waters, Arabian Gulf, Sultan Qaboos. Agricultural and Marine Sciences. Vol. 11, No. 1, pp: 71-88.
11
Biktashev, V.N.; Brindley, J. and Horwood, J.W., 2003. Phytoplankton blooms and fish recruitment rate. J. Plankton Res. Vol. 25, pp: 21-33.
12
Chihara, M. and Murano, M., 1997. An illustrated guide to marine plankton in Japan. Tokai University Press, Japan. 1574 p.
13
Eco-Zist, Consulting Engineers. 1980. Environmental report. Atomic Energy Organization of Iran.Tehran, Iran.
14
Fazeli, N.; Rezai Marnani, H.; Sanjani, S.; Zare, R.; Dehghan, S. and Jahani, N., 2010. Seasonal variation of Copepoda in Chabahar Bay-the Gulf of Oman. Jordan Journal of Biological Sciences. Vol. 3, No. 4, pp: 153-164.
15
Fazeli, N.; Savari, A.; Nabavi, M.B. and Zare, R., 2013. Seasonal variation of zooplankton bundance, composition and biomass in the Chabahar Bay, Oman Sea. International Journal of Aquatic Biology. Vol. 1, No. 6, pp: 294-305.
16
Hilly, C. and Glemarec, M., 1991. Polychaetes as biological indicators to measure organic environment, Ophelia. Suppl. Vol. 5, 696 P.
17
Ingole, B.; Sivadas, S.; Nanajkar, M.; Sautya, S. and Nag, A., 2008. A Comparative Study of Macrobenthic Community from Harbors along the Central West Coast of India. Environmental Monitoring and Assessment. DOI: 10.1007/s10661-008-0384-5.
18
Ludwig, J.A. and Raynolds, J.F., 1988. Statistical ecology, a primer on methods and computing John Wiley & Sons New York. 337 p.
19
Michel, H.B.; Behbehani, M. and Herring, D., 1986a. Zooplankton of the Western Arabian Gulf south of Kuwait waters, Kuwait Bulletin of marine Science. Vol. 8, pp: 1-36.
20
Monchenko, V.I., 1974. Cyclopidae. Fauna Ukrainii 27, 1-452. Musale, A. and Desai, D., 2010. Distribution and abundance of microbenthic polychaetes along the South Indian coast. Springer Science-Business Media B.V. Vol. 17, No. 1-4, pp: 423-436.
21
Niehoff, B., 2007. Life history strategies in zooplankton communities: The significance of female gonad morphology and maturation types for the reproductive biology of marine Calanoid copepods. Progress in Oceanography. Vol. 74, pp: 1-47.
22
Nour El-Din, N.M. and Al-Khayat, J.A., 2001. Impact of industrial discharges on the zooplankton community in the Messaieed industrial area, Qatar (Persian Gulf). International Journal of Environmental Studies. Vol. 58, pp: 173-184.
23
Pielou, E.C., 1966. Shannon’s formula as a measure of species diversity: its use and misuse. Am. Nat. Vol. 100, pp: 463-465.
24
Smith, S.L. 1995. Meso zooplankton response to seasonal climate in the tropical ocean. ICES Journal of Marine Science. Vol. 52, pp: 427-438.
25
Todd, C.D. and Laverack, M.S., 1991. Coastal marine zooplankton: a practical manual for students. Cambridge University Press. 106 p.
26
Vazirizadeh, A. and Hosseini, A.M., 2006. Impacts of Urban Sewage Effluent on the Intertidal Molluscs Communities of the Bushehr Coast. Journal of Marine Science and Technology. Vol. 4, pp: 69-82. (in Persian)
27
Wiggert, J.; Hood, R.; Banse, K. and Kindle, J., 2005. Monsoon-driven biogeochemical processes in the Arabian Sea. Progress in Oceanography. Vol. 65, No. 2, pp: 176-213.
28
Wilhm, J.L. and Dorris, T.C., 1966. Species Diversity of Benthic Macroinvertebrates in a Stream Receiving Domestic and Oil Refinery Eeffluents. American Midland Naturalist. Vol. 76, pp: 427-449.
29
Zaleha, K. and Sathiya, B.M., 2006. Zooplankton in East Coast of Peninsular Malaysia. Journal of Sustainability Science and Management. Vol. 2, pp: 87-96.
30
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی کیفیت آب رودخانه کرج (استان البرز) با استفاده از شاخصهای زیستی درشت بیمهرگان کفزی
بررسی شرایط اکولوژیک و بیولوژیک اکوسیستم های آبی میتواند نشانگر فشارهای احتمالی بر آنها باشد. گروههای مختلف درشت بیمهرگان کفزی دارای آستانه تحمل متفاوت نسبت به فشارهای محیطی ازجمله آلاینده ها هستند که به عنوان شاخصهای زیستی کیفیت آب در بسیاری از تحقیقات مورد استفاده قرار میگیرند. پژوهش حاضر اجتماعات کفزیان و ساختار جمعیتی آنها را در رودخانه کرج مورد بررسی قرار داده است و با توجه به عواملی که سبب آشفتگی محیطی میشوند، به طبقهبندی وارزیابی کیفیت آب این رودخانه در ایستگاههای مورد بررسی پرداخته شده است. نمونهبرداری از درشت بیمهرگان کفزی با استفاده از نمونهبردار سوربر (35×35سانتی متر مربع و با اندازه روزنه 250 میکرون) از زمستان 1395 تا پایان پاییز 1396 در 4 ایستگاه مطالعاتی انجام شدهاست. نمونه های جداسازی شده متعلق به 5 رده، 10 راسته و 23 خانواده هستند. فراوانترین گروههای درشت بیمهرگان کفزی در رودخانه کرج راسته Ephemeroptera با درصد فراوانی 47/6 درصد، Plecoptera 20/2 درصد و Diptera 15/6 درصد بوده است. نتایج نشان میدهد که آب رودخانه براساس شاخص شانون دارای آلودگی و براساس شاخص هیلسنهوف در ایستگاه های بالادست سد امیرکبیر (سیرا و پلخواب) به ترتیب با مقادیر 4/8 و 4/6 دارای کیفیت خوب و در ایستگاه های پایین دست سد ( آدران و پورکان ) به ترتیب با مقادیر 5/7 و 5/6 دارای کیفیت متوسط می باشد. هم چنین براساس شاخص سیمپسون میزان غالبیت در ایستگاه سیرا و پلخواب بالاتر است و طبق شاخص یکنواختی هیل ایستگاه های آدران و پورکان دارای جمعیتهای یکنواختتری میباشند. نتایج این تحقیق مبین کارایی استفاده از شاخصهای زیستی در تعیین کیفیت آب رودخانه کرج میباشد.
http://www.aejournal.ir/article_95568_b4d291a63c873ce5025b7b6372c55431.pdf
2019-09-23
335
344
درشت بیمهرگان کفزی
پایش زیستی
رودخانه کرج
تغییرات کیفیت آب
سیده مهسا
موسوی رینه
mahsa.moosavi.rei@ut.ac.ir
1
گروه انرژی های نو و محیط زیست، دانشکده علوم و فنون نوین، دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
شراره
پورابراهیم
sh_pourebrahim@ut.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
احمدی، م. و نفیسی بهابادی، م.، 1380.شناسایی موجودات شاخص بی مهره آب های جاری. انتشارات خبیر.
1
پورابراهیم، ش. و خاتمی، ه.، 1394. ارزیابی کیفیت آب رودخانه قره چای در استان مرکزی بر پایه شاخص های بیولوژیک و شناسایی منابع آلاینده. پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران.
2
تقی نژاد، ا.؛ احمدی، م ر.؛ کمالی، ا. و حقبیان. س.، 1394. پاسخ بوم شناختی بزرگ بی مهرگان رودخانه جاجرود به آلودگی های ناشی از پساب های انسان ساخت. تحقیقات منابع طبیعی تجدید شونده. دوره 6، صفحات 11 تا 24.
3
شکری پور، ز. و اشجع اردلان، ا.، 1395. شناسایی و بررسی تنوع ماکروبنتوزهای رودخانه کرج. مجله پژوهش های جانوری. دوره 29، شماره 4، صفحات442 تا 453.
4
عباسپور، ر.؛ علیزاده ثابت، ح.؛ هدایتی فرد، م. و مسگران کریمی، ج.، 1390. ارزیابی زیستی رودخانه چشمه کیله تنکابن (استان مازندران) با استفاده از شاخص های زیستی، ساختار جمعیتی و زیتودهای درشت بی مهرگان کفزی. مجله آبزیان و شیلات. دوره 2، شماره 8، صفحات 63 تا 75.
5
موسوی ده موردی، ل.؛ شوکت، پ.؛ بنایی، م. و نعمت دوست، ب.، 1396. بررسی لیمنولوژیک و ارزیابی زیستی رودخانه مارون در استان خوزستان. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 2، صفحات 289 تا 266.
6
محمودی فرد، ع.؛ ایمانپورنمین، ج.؛ شریفی نیا، م. و علاف نویریان, ح.،1393. استفاده از ترکیب جمعیت و الگوی پراکنش بی مهرگان کفزی، به منظور ارزیابی زیستی و پایش کیفیت آب رودخانه شاهرود (استان قزوین). بهره برداری و پرورش آبزیان. دوره 3، شماره 4، صفحات 91 تا 108.
7
مسگران کریمی، ج.؛آذری تاکامی، ق.؛ خارا، ح. و عباسپور، ر.، 1391. تعیین تنوع و فراوانی بزرگ بی مهرگان کفزی رودخانه دوهزار تنکابن با استفاده از شاخص های زیستی. مجله آبزیان و شیلات. جلد 3، شماره 4، صفحات 91 تا 108.
8
Alatalo, R.V., 1981. Problems in the measurement of evenness in ecology. Oikos. pp: 199-204.
9
Collier, K.J., 2008. Temporal Patterns in the stability, persistence and condition of stream macroinvertebrate communities: relationships with catchment land-use and regional climate. Freshwater biology. Vol. 53, No. 3, pp: 603-616.
10
Entrekin, S.; Stephen, W.; Melanie, B. and Craig, H., 1999. Unique steephead stream segments in Southwest Georgia: Invertebrate Diversity and Biomonitoring.
11
Girgin, S., 2010. Evaluation of the benthic macroinrertebrate distribution in a stream environment during summer using biotic index. Gazi University,Ankara, Turkey. Vol. 7, pp: 11-16.
12
Heino, J., 2003. Defining macroinvertebrate assemblage types of headwater streams: implications for bioassessment and conservation. Ecological applications. Vol. 13, No. 3, pp: 842-52.
13
Hilsenhoff, W.L., 1988. Rapid field assessment of organic pollution with a family-level biotic index. Journal of the North American benthological society. Vol. 7, No. 1, pp: 65-68.
14
Loch, D.; Jerry, W. and Perlmutter, D., 1996. The effect of Trout Farm effluent on the taxa richness of benthic macroinvertebrates. Aquaculture. Vol. 147, No. 1-2, pp: 37-55.
15
Mandaville, S.M., 2002. Benthic Macroinvertebrates in freshwaters: taxa tolerance values, metrics, and protocols. Citeseer.
16
Needham, J.G. and Needham, P.R., 1976. A guide to the study of fresh water biology. Fifth edit.
17
Quigley, M., 1977. Invertebrates of Streams and Rivers. Edward Arnold.
18
Resh, B.; Vincent, H. and David, M.R., 1993. Freshwater biomonitoring and benthic macroinvertebrates.
19
Sandin, L., 2003. Benthic macroinvertebrates in swedish streams:community structure, taxon richness, and environmental relations. Ecography. Vol. 26, No. 3, pp: 269-282.
20
Sarkar, A., 2012. Bioindicators of River Yamuna at Agra. Odonatologica. Vol. 41, No. 4.
21
Smith, H.; Tilman, D. and Nekola, J., 1999. Eutrophication: Impacts of excess nutrient inputs on freshwater, marine, and terrestrial ecosystems. Environmental pollution. Vol. 100, No. 1-3, pp: 179-196.
22
Soldner, M., 2004. Relationship between macroinvertebrate Fauna and environmental variables in small streams of the Dominican Republic. Water Research. Vol. 38, No. 4, pp: 863-874.
23
Voelker, D. and Renn, D., 2000. Benthic Invertebrates and quality of streambed sediments in the White River and selected tributaries in and near Indianapolis, Indiana. pp: 1994-1996.
24
Vörösmarty, M. and Charles, J., 2010. Global Threats to human water security and river biodiversity. Nature. Vol. 467, No. 7315, pp: 555.
25
Wang, X., 2012. Spatial distribution of benthic macroinvertebrates in the erhai basin of Southwestern China. Journal of freshwater ecology. Vol. 27, No. 1, pp: 89-96.
26
Wang, X. and Xiang, T., 2017. Macroinvertebrate community in relation to water quality and riparian land use in a substropical mountain stream, China. Environmental science and pollution research. Vol. 24, No. 17, pp: 14682-14689.
27
Wilhm, J.L. and Dorris, T., 1968. Biological parameters for water quality criteria. Bioscience. pp: 477-481.
28
William Bouchard, R. and Paul, S., 2012. Guide to Aquatic Invertebrate Families of Mongolia. Saint Paul, Minnesota, USA. pp: 38-198.
29
Xu, M.; Zhaoyin, W.; Xuehua, D. and Baozhu, P., 2014. Effects of Pollution on macroinvertebrates and water quality bio-assessment. Hydrobiologia. Vol. 729, No. 1, pp: 247-259.
30
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر مزارع پرورش ماهی پالنگان بر جوامع بزرگ بی مهرگان کفزی رودخانه سیروان با استفاده از شاخص های زیستی هیلسنهوف و شانون
در پژوهش حاضر تاثیر مزارع پرورش ماهی پالنگان بر جوامع بزرگ بی مهرگان کفزی در 3 ایستگاه شامل 1) ایستگاه بالادست، 2) ایستگاه 100 متری و 3) ایستگاه یک کیلومتری بعد از مزارع پرورش ماهی از دیماه 1394 تا خرداد 1395 بررسی شد. برای بررسی ایستگاه ها از شاخص های هیلسنهوف (HFBI) و تنوع شانون به منظور بررسی وضعیت کیفی رودخانه سیروان استفاده شد. براساس نتایج، در مجموع تعداد 4148 نمونه بزرگ بی مهرگان کفزی جداسازی و شناسایی شد که به 18 خانواده، 13 راسته و 20 جنس تعلق داشتند. ایستگاه ها به لحاظ شاخص های زیستی هیلسنهوف و تنوع شانون تفاوت معنی داری نشان دادند (0/05>p). به طورکلی بیش ترین و کم ترین تراکم به ترتیب در ماه های اسفند و خرداد و تنوع به ترتیب در در ماه های دی و بهمن دیده شد. بیش ترین فراوانی ماکروبنتوزها متعلق به ایستگاه 1 در بالا دست و کم ترین فراوانی در ایستگاه 2 در 100 متر بعد از مزارع قرار داشت. به طور میانگین بیش ترین و کم ترین شاخص شانون وینر به ترتیب در ماه های خرداد و اردیبهشت، بهمن بود. به طور میانگین در طول 6 ماه شاخص تنوع گونه ای شانون وینر 1/26 به دست آمد. از نظر وضیعت کیفی آب رودخانه در ایستگاه 1 عالی و در ایستگاه 2 به دلیل ورود آلودگی متوسط بود. میانگین بیش ترین و کم ترین شاخص هیلسینهوف به ترتیب در ماه های اردیبهشت و اسفند بود. به طور میانگین در طول 6 ماه شاخص هیلسینهوف 5/94 به دست آمد. به لحاظ وضیعت کیفی آب رودخانه در ایستگاه 3 عالی و در ایستگاه 2 به دلیل ورود آلودگی متوسط بود .
http://www.aejournal.ir/article_98969_e7ad12727564b1133e6dd43f603a826d.pdf
2019-09-23
345
354
پساب پرورش ماهی
کیفیت آب
بزرگ بی مهرگان کفزی
شاخص های زیستی
طیب
ویسی
tayebweysi@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
LEAD_AUTHOR
نصرااله
احمدی فرد
nasrollah@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
AUTHOR
ناصر
آق
n.agh@urmia.ac.ir
3
گروه بیولوژی و تکثیر و پرورش، پژوهشکده آرتمیا و آبزیان، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
AUTHOR
مرتضی
کمالی
kamalilasem@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
AUTHOR
احمدی، م. و نفیسی، م.، 1380. شناسایی موجودات شاخص بی مهره آب های جاری. انتشارات خبیر. 240 صفحه.
1
اسحقی نیموری، م.؛ پاتیمار، ر.؛نادری جلودار، م.؛ جعفریان، ح. و قربانی نصرآبادی، ر.، 1392. ارزیابی کیفیت آب رودخانه بابلرود براساس شاخص زیستی هیلسنهوف. اولین همایش سراسری کشاورزی و منابع طبیعی پایدار. 7 صفحه.
2
ایمانپورنمین، ج.؛ شیفی نیا، م. و بزرگی ماکرانی، ا.، 1392. ارزیابی پساب مزارع پرورش ماهی بر روی بزرگ بی مهرگان کفزی براساس شاخص های زیستی در رودخانه تجن (شمال ایران). مجله علوم زیستی کاسپین. دوره 1، شماره 11، صفحات 29 تا 39.
3
جرجانی، س.؛ قلیچی، ا.؛ اکرمی، ر. و خیرآبادی، و.، 1387. ارزیابی شاخص زیستی آلودگی و فون کفزیان نهر مادرسو پارک ملی گلستان. مجله علمی شیلات ایران. دوره 1، شماره 2، صفحات 42 تا 51.
4
خوش اخلاق، م.؛ کامرانی، ا.؛ ابراهیمی درچه، ع. و سوری نژاد، ا.، 1394. اثر پساب مزارع پرورش ماهی قزل آلا بر بزرگ بی مهرگان کفزی رودخانه ماربر سمیرم. مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 1، شماره 5، صفحات 103 تا 112.
5
شاپوری، م.؛ ذوالریاستین، ن. و آذرباد، ح.، 1389. ارزیابی سریع کیفیت آب رودخانه گرگانرود بر پایه شاخص های زیستی. فصلنامه علوم و فنون منابع طبیعی. دوره 5، شماره 3، صفحات 116 تا 129.
6
عباسپور، ر.؛ هدایتی فرد، م.؛ علیزاده ثابت، ح.ر.؛ حسن زاده، ح. و مسگران کریمی، ج.، 1393. برآورد شاخص های زیستی و کیفی آب رودخانه چشمه کیله تنکابن با استفاده از جوامع درشت بی مهرگان کفزی و فاکتورهای فیزیکی و شیمیایی آب. مجله علوم و مهندسی محیط زیست. دوره 1، شماره 2، صفحات 59 تا 73.
7
عظیمی، ا.ا.؛ امیرنژاد، ر.؛ نصراله زاده ساروی، چ. و سلیمانی رودی، ا.، 1394. طبقه بندی کیفی رودخانه زارمرود (ساری مازندران) با استفاده از شاخص زیستی هیلسینهوف. مجله اکولوژی تالاب. دوره 1، شماره 7، صفحات 39 تا 48.
8
قانع، ا.، 1392. ترکیب جمعیت ماکروبنتوزها و توسعه آبزی پروری در رودخانه زاینده رود. نشریه توسعه آبزیپروری. دوره 7، شماره 4، صفحات 58 تا 65.
9
قانع، ا. و صیادرحیم، م.، 1388. ارزیابی کیفی رودخانه سبز کوه در استان چهار محال و بختیاری با استفاده از شاخص های زیستی کفزیان. تنش های محیطی در علوم زراعی. دوره 2، شماره 2، صفحات 185 تا 197.
10
کمالی،م. و اسماعیلی ساری، ع.،1388. ارزیابی زیستی رودخانه لاسم با استفاده از ساختار جمعیت بزرگ بی مهرگان کفزی. مجله علوم زیستی واحد لاهیجان. دوره 3، شماره 2، صفحات 51 تا 61.
11
گلدسته، ا.؛ خدارحمی، م.؛ ترابی، م. و اصغری، ر.، 1377. راهنمای کاربران Spss. جلدسوم. مرکز فرهنگی انتشارات حامی. 455 صفحه.
12
محبوبی صوفیانی، ن. و نادری، غ.ر.، 1393. کلید شناسایی بی مهرگان نهرها و رودخانه ها (ترجمه) انتشارات جهاد دانشگاهی اصفهان. 131صفحه.
13
نادری جلودار، م.؛ اسماعیلی ساری، ع.؛ احمدی، م.؛ سیفآبادی، ج. و عبدلی، ا.، 1385. بررسی آلودگی ناشی از کارگاه های پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان بر روی پارامترهای کیفی آب رودخانه هراز. مجله علوم محیطی. دوره 2، شماره 4، صفحات 18 تا 27.
14
نوروزی، ن.؛ قربانی، ر.؛ سعدالدین، ا.؛ ملائی، م. و نعیمی، ع.ا.، 1394. پایش رودخانه زیارت با بهره گیری از فون بزرگ بی مهرگان کفزی استان گلستان . مجله محیط زیست جانوری. دوره 7، شماره 2، صفحات 141 تا 148.
15
مهدوی، م.؛ بذرافشان، ا.؛ جوانشیر، ا.؛ موسوی ندوشن، ر. و باباپور، م.، 1389. بررسی امکان تاثیر جامعه کفزیان رودخانه طالقان روی تعیین کیفیت آب. نشریه محیط زیست طبیعی، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 63، شماره 1، صفحات 75 تا 91.
16
میررسولی، ا.؛ نظامی، ش.؛ خارا، ح. و قربانی، ر.، 1391. تاثیر پساب کارگاه های پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان بر روی بزرگ بی مهرگان کفزی رودخانه زرین گل. مجله توسعه آبزی پروری. دوره 6، شماره 2، صفحات 81 تا 92.
17
ملازاده، ن.، 1393. ارزیابی وضعیت کیفی رودخانه ماربر با استفاده از شاخص های زیستی و فون ماکروبنتوز. فصلنامه علمی اکوبیولوژی تالاب. دوره 19، شماره 6، صفحات 47 تا 56.
18
Camargo, L.A.; Marques Junior, J. and Pereira, G.T., 2010. Spatial variability of physical attributes of an alfisol under different hillslope curvatures. Revista Brasileira de Ciencia do Solo. Vol. 34, pp: 617-630.
19
Elliott, J.M.; Humpesch, U.H. and Macan, T.T., 1988. Larvae of the British Ephemeroptra: A Key with ecological notes. Fresh water Biological Association Scientific publication. Vol. 49, 152 p.
20
Engelhardt, W., 1977. Was Lebt in Tuempel, Bach und Weiher, Kosmos, Franchsche Verlagshandlung and Stuttgart. 355 p.
21
Entrekin, S.; Gollady, S.; Ruhlman, M. and Hedman, C., 1999. Unique steep Head stream segments in Southwest Georgia: Invertebrate diversity and biomonitoring. The University of Georgia, Athens., Georgia, Georgia Water Resources Conference. 4 p.
22
Fenoglio, S.; Badino, G. and Bona, F., 2002. Benthic Macroinvertebrate Communities as indicators of river environment quality: an experience in Nicaragua, Review Biology Trop. Vol. 50, No. 3-4, pp: 1125-1131.
23
Gislason, G.M.; Hrofnsdottir, T. and Gardarsson, A., 1994. Lang- term monitoring of numbers of Chironomidae and Simuliidae in the River Laxa, North Iceland. Verhandlungen Interna Verein. Limnology. Vol. 25, pp: 1492-1495.
24
Guilpart, A.; Roussel, J.M.; Aubin, J.; Caquet, T.; Marle, M. and Le Bris, H., 2012. The use of benthic invertebrate community and water quality analyses to assess ecological consequences of fish farm effluents in rivers. Ecological Indicators. Vol. 23, pp: 356-365.
25
Hilsenhoff, W.L., 1988. Rapid field assessment of organic pollution with a family -level biotic index. Journal of the North American Benthological society. Vol. 7, No. 1, pp: 65-68.
26
Humpesch, U.H. and Fesl, C., 2002. The effect of river bed management on the habitat structure and Macro invertebrate’s community of a ninth order river, in Austria. Archir fur Hydrobiology Large Rivers. Vol. 13, No. 1, pp: 29-46.
27
Jay, P.; Maharaj, B. and Pandit, K., 2010. A macro invertebrate based new biotic index to monitor river water quality. Current Science. Vol. 99, pp: 2-25.
28
Lenat, D.R., 1988. Water quality assessment of streams using a qualitative collection method for benthic macroinvertebrates. Journal of North American Benthological Society. Vol. 7, No. 3, pp: 222-233.
29
Loch, D.D.; West, J.L. and Perlmutter, D.G., 1996. The effect of trout farm effluent on the taxa richness of benthic macroinvertebrates. Aquaculture. Vol. 147, pp: 37-55.
30
Milligan, M.R., 1997. Identification manual for the aquatic Oligochaeta of Florida. Freshwater Oligochaetes. Department of Environmental Protection. Florida. Department of Environmental Protection. Tallahassee. 187 p.
31
Ortize, J.D. and Puig, M.A., 2007. Point source effects on density, biomass and diversity of benthic macroinvertebrate in a Mediterranean stream. River Research and Applications. Vol. 23, pp: 155-170.
32
Rasmussen, A.K. and Pescador, M.L., 2002. Guide to the megalotera and aquatic neuropteran Florida Department and Environmental Protection. Tallahassee. 45 p.
33
Schwoerbel, M., 1970. Methods of Hydrobiology: (Freshwater Biology). Burlington : Elsevier Science, http://www.isbnsearch.org/isbn/9781483184227.
34
Sladecek, V., 1973. System of Water quality from the biological point of view, E. Schweeizerbartsche Verlagsbuchhanlung, Stuttgart.
35
Voelker, D.C. And Renn, D.E., 2000. Benthic invertebrates and quality of streambed sediments in the White River and selected tributaries in and near Indianapolis, Indiana. United States Geological Survey Science for a Changing World. 55 p.
36
Washington, H.G., 1984. Diversity, biotic and similarity indices: a review with special relevanceto aquatic ecosystems. Water Research. Vol. 18, pp: 653-694.
37
Wegl, W., 1983. Index fuer die Limnosaprobitaet, Wasser und Abwasser, Herausgegeben Von der Bundesanstalt fuer wasserguete in Wien-Kaisermuehlen. Band 26.
38
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تولیدات صیادی، فراوانی طولی و فاکتور وضعیت ماهی مرکب ببری (Sepia pharaonis) صید شده به وسیله گرگور در آب های استان بوشهر، شمال خلیج فارس
این مطالعه با هدف برآورد میزان بهره برداری و تعیین برخی از فاکتورهای زیستی ماهی مرکب ببری صید شده به وسیله گرگور در استان بوشهر (شمال خلیج فارس) انجام شد. فرآیند جمع آوری داده ها از تاریخ 1 تا 27 اسفند 1395 صورت پذیرفت. میزان ساحل آوری و محصول ماهی مرکب ببری صید شده توسط گرگورها در استان بوشهر، در یک بازه زمانی 12 ساله، به ترتیب برابر با 354/833 تن و 162/260 کیلوگرم بر کیلومترمربع در سال برآورد گردید. دامنه طولی و وزنی ماهی های مرکب ببری صید شده (300 نمونه زیست سنجی شده) به ترتیب (62/59±24/4) 36-13 سانتی متر (طول جبه) و (1870/61±791) 4200-300 گرم بود. بررسی های آماری Randomization Test وKolmogorov–Smirnov Z Test Two Independent Samples تفاوت های معنی داری را در مقایسه فراوانی طولی آبزی در شرایط متفاوت صید نظیر عمق غوطه وری گرگورها، زمان غوطه وری گرگورها و نوع شناور نمایان ساختند (0/001=p). میانگین فاکتور وضعیت ماهی مرکب ببری 1/25 به دست آمد که بیانگر شرایط مطلوب زیست ماهی های مرکب ببری صید شده به وسیله گرگور می باشد. آنالیز آماری Independent Samples T Test تفاوت معنی داری را تنها در مقایسه فاکتور وضعیت در زمان های غوطه وری گرگورها متفاوت نمایان ساخت (0/001=p). نتایج نشان داد که با توجه به هم پوشانی و هم زمانی فصل صید و فصل تولیدمثل ماهی مرکب ببری در استان بوشهر و براساس دامنه فراوانی طولی و وزنی ماهی مرکب ببری صید شده به وسیله گرگور می توان از شیوه صید گرگور به عنوان یک شیوه انتخابی برای صید ماهی مرکب نام برد.
http://www.aejournal.ir/article_95542_f037c5bc7e6063db231fdd23d1c30d1b.pdf
2019-09-23
355
362
ماهی مرکب ببری
گرگور
صید
فراوانی طولی
بوشهر
رضا
بدلی
rezabadali407@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
سید یوسف
پیغمبری
sypaighambari@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
هادی
رییسی
raeisi_hadi@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده علوم کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
AUTHOR
محمد جواد
شعبانی
shabani401@gmail.com
4
پژوهشکده میگوی بوشهر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران
AUTHOR
ثریا، س.ف.؛ ولی نسب، ت. و قوام مصطفوی، پ.، 1391. ﺗﻌﻴﻴﻦ ﺳﻦ ﻣﺎﻫﻲ ﻣﺮﻛﺐ ﺑﺒﺮی (Sepia pharaonis) ﺑﺎ اﺳﺘﻔﺎده از اﺳﺘﺎﺗﻮﻟﻴﺖ در خلیج فارس و دریای عمان. فصلنامه محیط زیست جانوری. شماره 14، صفحات 35 تا 44.
1
خدادادی، ر.؛ یحیوی، م.؛ قربانی واقعی، ر. و شعبانی، م.ج.، 1389. میزان هم آوری و فصل تخمریزی ماهی مرکب ببری در آب های استان بوشهر. مجله علمی شیلات ایران. شماره 19، صفحات 31 تا 38.
2
شعبانی، م.ج.؛ خورشیدیان، ک.؛ اسماعیلی، ع. و مبرزی، ع.، 1394. گزارش ﺑﺮرﺳﻲ وﺿﻌﻴﺖ ﺻﻴﺪ ﻣﺎﻫﻲ ﻣﺮﻛﺐ در اﺳﺘﺎن ﺑﻮﺷﻬﺮ. ﭘﮋوﻫﺸﻜﺪه ﻣﻴﮕﻮی ﻛﺸﻮر ﺑﺨﺶ ﺑﻴﻮﻟﻮژی وارز ﻳﺎﺑﻲ ذﺧﺎﺋﺮ آﺑﺰﻳﺎن. 11 صفحه.
3
شعبانی، م.ج.؛ کامرانی، ا.؛ یحیوی، م.؛ خورشیدیان، ک. و خدادادی، ر.، 1389. بررسی تأثیر اندازه چشمه های گرگور بر ترکیب و فراوانی ماهیان صید شده در استان بوشهر. مجله منابع طبیعی ایران. شماره 2، صفحات 97 تا 110.
4
صلاحی گزاز، م.؛ پیغمبری، س.ی. و عباسپورنادری، ر.، 1394. بررسی ساختار طولی، ترکیب صید و وضعیت تلاش صیادی ماهی مرکب ببری در ترالرهای کف دریای عمان. مجله اقیانوس شناسی. شماره24، صفحات 69 تا 76.
5
ولی نسب، ت.، 1381. گزارش تعیین تعداد ادوات صید گوشگیر و سایر ادوات صید در استان بوشهر. مرکز تحقیقات شیلات ایران. 49 صفحه.
6
ولی نسب، ت.؛ کیوان، ا.؛ عمادی، ح. و عریان، ش.، 1379. بررسی ریخت سنجی ماهی مرکب ببری (Sepia pharaonis) در آب های خلیج فارس و دریای عمان. مجله علمی شیلات ایران. شماره 9، صفحات 79 تا 92.
7
Al-kharusi, F.S.; Al-habsi, S. and Mehanna, L., 2014. Population dynamics of the Pharaoh Cuttlefish Sepia pharaonis (Mollusca: Cephalopoda) in the Arabian Sea coast of Oman. Indian Journal of Fisheries. Vol. 61, No.1, pp: 7-11.
8
Amar, E.C.; Cheong, R.M. and Cheong, M.V.T., 1996. Small-scale fisheries of coral reefs and the need for community-based resource management in Malalison Island, Philippines. Fisheries research. Vol. 25, No. 3, pp: 265-277.
9
Anderson, F.E.; Engelke, R.; Jarrett, K.; Valinassab, T.; Mohamed, K.S.; Asokan, P.K.; Zacharia, P.U.; Nootmorn, P.; Chotiaputta, Ch. and Dunning, M., 2010. Phylogeny of the Sepia pharaonis species complex (cephalopoda: sepiida) based on analyses of mitochondrial and nuclear DNA sequence data. Journal of Molluscan Studies. Vol. 77, No. 1, pp: 65-75.
10
Aoyama, T. and Nguyen, T., 1989. Stock assessment of cuttlefish off the coast of People’s Democratic Republic of Yemen. Journal of Shimonoseki University Fisheries. Vol. 37, pp: 61-112.
11
Froese, R., 2006. Cube law, condition factor and weight-length relationships: history, meta-analysis and recommendations. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, No. 4, pp: 241-253.
12
Gabr, H.R.; Hanlon. R.T.; Hanafy, M.H. and El-Etreby, S.G., 1998. Maturation, fecundity and seasonality of reproduction of two commercially valuable cuttlefish, Sepia pharaonis and Sepia dollfusi, in the Suez Canal. Journal of Fisheries Research. Vol. 36, No. 2, pp: 99-115.
13
Htun-Han, M., 1978. The reproductive biology of the dab Limanda limanada (L.) in the North Sea: gonadosomatic index, hepatosomatic index and condition factor. Journal of Fish Biology. Vol. 13, No. 3, pp: 351-377.
14
Jereb, P. and Roper, C.F.E., 2005. Cephalopods of the world. FAO species catalogue for fishery purposes. 262 p.
15
Le Cren, E.D., 1951. The length-weight relationships and seasonal cycle in gonad weight and condition in the perch (Perca fluviatilis). Journal of Animal Ecology. Vol. 20, pp: 201-219.
16
Luchavez, T.; Luchavez, J. and Alcala, A.C., 1984. Fish and invertebrate yields of the coral reefs of Selinog Island in the Mindanao Sea and Hulao-Hulao in Panay Gulf, Philippines. Silliman Journal. Vol. 31, pp: 57-71.
17
Susikumar, G.; Mohamed, K.S. and Bhat, U.S., 2012. Inter-cohort growth patterns of pharaoh cuttlefish Sepia pharaonis (Sepioidea: Sepiidae) in Eastern Arabian Sea. Review of Tropic Biology. Vol. 61, No. 1, pp: 1-14.
18
Sturges, H.A., 1926. The choice of a class interval. Journal of the American Statistical Association. Vol. 21, pp: 65- 66.
19
Sundaram, S., 2014. Fishery and biology of Sepia pharaonis Ehrenberg, 1831 off Mumbai, northwest coast of India. Journal of the Marine Biological Association of India. Vol. 56, No. 2, pp: 43-47.
20
Valinassab, T.; Daryanabard, R.; Dehghani, R. and Pierce, G.J., 2006. Abundance of demersal resources in the Persian Gulf and Oman Sea. Journal of Marine Biological Association of the United Kingdom. Vol. 86 No. 1, pp: 1455-1462.
21
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی مورفولوژیک و مولکولی گونه غالب خیار دریایی در منطقه اولی (خلیج فارس-استان بوشهر) و آنالیز برخی ترکیبات دیواره بدن آن
هدف از این پژوهش، شناسایی یکی از گونه های غالب خیار دریایی در منطقه اولی- بوشهر ، با استفاده از روش مورفولوژیک و مولکولی و بررسی برخی ترکیبات تشکیل دهنده دیواره بدن ازجمله پروتئین کلاژن بوده است. تا علاوه بر شناسایی دقیق گونه، با مطالعه ترکیبات دیواره بدن آن بتوان، از یافته های این تحقیق در جهت ارتقاء صنایع غذایی و دارویی در کشور استفاده نمود. در این راستا، ابتدا با شناسایی مورفولوژیک از طریق بررسی اوسیکل های دیواره بدن و سپس با شناسایی مولکولی از طریق تعیین توالی بخشی از ژنوم میتوکندریایی 16SrRNA، گونه مورد بررسی به عنوان گونه Holothuria leucospilota شناسایی گردید. در بررسی ترکیبات دیواره بدن، پروتئین و رطوبت با مقادیر بالای 70% بیش ترین ترکیبات تشکیل دهنده بدن گونه مورد نظر بود و چربی کم ترین مقدار را در بین سایر ترکیبات داشته است. از بین ترکیبات پروتئینی، استخراج پروتئین کلاژن به روش هضم آنزیمی با پپسین صورت گرفت و با استفاده از آزمون SDS-PAGE، نوع آن و زیر واحدهای تشکیل دهنده آن با توجه به پروفایل وزن مولکولی، در مقایسه با سایر تحقیقات، صورت گرفت. روش استخراج موثر تشخیص داده شد و کلاژن استخراجی از نوع I بوده که دارای سه زنجیره 1α با وزن مولکولی حدود 140 کیلو دالتون می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_101056_f8f507e92a6967199052f11c0524e752.pdf
2019-09-23
363
378
شناسایی مولکولی و مورفولوژیکی
خیار دریایی
کلاژن
ترکیبات دیواره بدن
فاطمه
قبادیان
marinebiologist2007@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
حسین
ذوالقرنین
zolgharnein@kmsu.ac.ir
2
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
AUTHOR
محمدعلی
سالاری
salari@kmsu.ac.ir
3
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
AUTHOR
ایرج
نبی پور
4
پژوهشکده زیست فناوری دریا، مرکز تحقیقات زیست پزشکی شهدای خلیج فارس، دانشگاه علوم پزشکی بوشهر، بوشهر، ایران
AUTHOR
امیر
وزیری زاده
amirvz@yahoo.com
5
مرکز تحقیقات آبزیان خلیج فارس، دانشگاه خلیج فارس بوشهر، بوشهر، ایران
AUTHOR
عطاران فریمان، گ.؛ طاهری، ع. و برزکار، ن.، 1395. ارزیابی کلاژن دیواره بدن خیار دریایی گونه Stichopus horrens خلیج چابهار و ژلاتین حاصل از آن. مجله فصلنامه علوم و صنایع غذایی. دوره 52، شماره 13، صفحات 79 تا 89.
1
Abedin, M.Z.; Karim, A.A.; Ahmed, F.; Latiff, A.A.; Gan, C.Y. and Ghazali, F. C., 2013. Isolation and characterization of pepsin-solubilized collagen from the integument of sea cucumber (Stichopus vastus). J Sci Food Agric. Vol. 93, pp: 1083-1088.
2
Adibzadeh, N.; Aminzadeh, S.; Jamili, S.; Karkhane, A.A. and Farrokhi, N., 2014. Purification and Characterization of Pepsin-Solubilized Collagen from Skin of Sea Cucumber Holothuria parva. Appl Biochem Biotechnol. Vol. 173, No. 6, pp: 143-154.
3
Altschul, S.F.; Gish, W.; Miller, W.; Myers, E.W. and Limpman, D.J., 1990. Basic local alighnment search tools. Mol Biol.Vol.215, No. 3, pp: 403-410.
4
Amos, B. and Hoelzel, A.R., 1992. Application of Molecular Genetic Techniques to The Conservation of small populations. Biol Conserv. Vol. 61, pp: 133-144.
5
AOAC. 1990. OfficialMethods of Analyses of Association of Analytical Chemists. AOAC, Washington, DC (15th edn.)
6
Aydin, M.; Sevgili, H.; Tufan, B.; Emre, Y. and Kose, S., 2011. Proximate composition and fatty acid profile of three different fresh and dried commercial sea cucumbers from Turkey. Int J Food Sci Technol. Vol. 46, pp: 500-508.
7
Aydın, M.; Sevgili, H.; Tufan, B.; Emre, Y. and Köse, S., 2011. Proximate composition and fatty acid profile of three different fresh and dried commercial sea cucumbers from Turkey. Int J Food Sci Technol. Vol. 46, No. 3, pp: 500-508.
8
Bilgin, Ş. and İzci, L., 2016. The effects of drying & boiling process on nutritional components of Holothuria forskali (Delle Chiaje, 1823). J Food Health Sci. Vol. 2, No. 1, pp: 1-8.
9
Bilgin, S. and Tanrikulu, O.H., 2018. The changes in chemical composition of Holothuria tubulosa (Gmelin, 1788) with ambient-drying and oven-drying methods. Food Sci Nutr. Vol. 2, pp: 1-6.
10
Billett, D.S.M., 1991. Deep Sea Holothurians. Oceang Mar Biol. Vol. 29, pp: 259-317.
11
Birkeland, Ch., 1989. The influence of echinoderms on coral reef communities: pp: 1-79. In: Jangoux, M. and Lawrence, J.M., (eds.). 1989. Echinoderm Studies. Balkema, Rotterdam, Brookfield. 383 P.
12
Çaklı, Ş.; Cadun, A.; Kışla, D. and Dinçer, T., 2004. Determination of quality characteristics of Holothuria tubulosa (Gmelin, 1788) in Turkish Sea (Aegean Region) depending on sun drying process step used in Turkey. J Aquat Food Product Techol. Vol. 13, No.3, pp: 69-78.
13
Chang-Lee, M.V.; Price, R.J. and Lampila, L.E., 1989. Effect of processing on proximate composition and mineral content of sea cucumbers (Parastichopus spp.). J Food Sci. Vol. 54, pp: 567-572.
14
Chukwu, O., 2009. Influences of drying methods on nutritional properties of tilapia fish (Oreochromis nilotieus). World J Agric Sci. Vol. 5, pp: 256-258.
15
Ciarlo, A.S.; Paredi, M.E. and Fraga, A.N., 1997. Isolation of soluble collagen from hake skin (Merluccius hubbsi). J Aquat Food Product Techol. Vol. 6, No.1, pp: 65-77.
16
Clouse, R.; Janies, D. and Kerr, A.M., 2005. Resurrection of Bohadschia bivittata from B. marmorata (Holothuroidea: Holothuriidae) based on behavioral, morphological, and mitochondrial DNAevidence. Zoology. Vol. 108, No. 1, pp: 27-39.
17
Conand, C., 1998. Holothurians (Sea Cucumber, Class Holothuridea). FAO, Rome, FAO species identification guid for fishery parpose. pp: 1158-1190.
18
Cui, F.X.; Xue, C.H.; Li, Z.J.; Zhang, Y.Q.; Dong, P.; Fu, X.Y. and Gao, X., 2007. Characterization and subunit composition of collagen from the body wall of sea cucumber Stichopus japonicus. Food Chem. Vol. 100, No. 3, pp: 1120-1125.
19
FAO. 2008. Sea cucumbers: A global review of fisheries and trade. FAO FAO Fish Aquac Tech Pap. Vol. 516, pp: 1-317.
20
Foegeding, E.A.; Lanier, T.C. and Hultin, H.O., 1996. Collagen. In O. R. Fennema (Ed.), Food chem (3rd ed): New York: Marcel Dekker, Inc. pp: 902-906.
21
Friess, W., 1998. Collagen biomaterial for drug delivery. Eur J Pharm Biopharm. Vol. 45, pp: 113-136.
22
Gao, Y.; Li, Z.; Qi, Y.; Guo, Z.; Lin, Y.; Li, W.; Hu, Y. and Zhao, Q., 2016. Proximate composition and nutritional quality of deep sea growth sea cucumbers (Stichopus japonicus) fromdifferent origins. J Sci Food Agric. Vol. 96, pp: 2378-2383.
23
Granda, V.T., 2006. The biological and trade status of sea cucumber in the families Holothuridae and Stichopodidae. In: Convention on International trade in Endangered Species of Wild Fauna and Flora, Twenty- Second meeting of the animals Committee. pp: 7-13.
24
Hartl, D.L. and Clark, A.G., 1989. Principles of Population Genetics. 2nd ed. Massachusetts, USA: SinauerAssociates, Inc. 682 p.
25
Kamarudin, K.R.; Hashim, R. and Usup, G., 2010. Phylogeny of Sea Cucumber (Echinodermata: Holothuroidea) as Inferred from 16S Mitochondrial rRNA Gene Sequences. Journal of Sains Malaysiana. Vol. 39, No. 2, pp: 209-218.
26
Kamarudin, K.R.; Rehan, A.M.; Hashim, R.; Usup, G.; Fauzanahmad, H.; Anua, H.A. and Yamanidris, M., 2011. Molecular Phylogeny of Holothuria (Mertensiothuria) leucospilota (Brandt 1835) as Inferred from Cytochrome C Oxidase I Mitochondrial DNA Gene Sequences. Journal of Sains Malaysiana. Vol. 40. No. 2, pp: 125-133.
27
Kamarul R.K.; Aisyah, M.R.; Ahmad Lutfi, L.; Hajar Fauzan, A.; Mohd Hanafi, A.; Noor Faizul Hadry, N.; Ridzwan, H.; Rosnah, H. and Gires, U., 2009. Coral Reef Sea Cucumbers in Malaysia. Malay J Sci. Vol. 28, No. 2, pp: 171-186.
28
Kamarul, R.K. and Ridzwan, B.H., 2005. Distribution and Taxonomic Revision of Sea Cucumbers (Echinodermata: Holothuroidea) in Several Populations of Malaysia. International Conference on Biogeography and Biodiversity: Wallace in Sarawak- 150 Years Later, 13-15 July, Kuching, Sarawak, Malaysia. 225 p.
29
Kerr, A.M.; Janies, D.A.; Clouse, R.M.; Samyn, Y.; Kuszak, J. and Kim, J., 2005. Molecular Phylogeny of Coral-Reef Sea Cucumbers (Holothuriidae: Aspidochirotida) Based on 16S Mitochondrial Ribosomal DNASequence. Mar Biotechnol. Vol. 7, pp: 53-60.
30
Kimura, S. and Tanaka, H., 1983. Characterization of top shell muscle collagen comprising three identical α1chains. Bull Jpn Soc Sci Fisheries. Vol. 49, pp: 229-232.
31
Kittiphattanabawon, P.; Benjakul, S.; Visessanguan, W.; Nagai, T. and Tanaka, M., 2005. Characterisation of acid soluble collagen from skin and bone of bigeye snapper (Priacanthus tayenus). J Food Chem. Vol. 89, pp: 363-372.
32
Laemmli, U.K., 1970. Cleavage of structural proteins during the assembly of head of bacteriophage T4. Nature. Vol. 227, pp: 680-685.
33
Larkin, M.A.; Blackshields, G.; Brown, N.P.; Chenna, R.; McGettigan, P.A.; McWilliam, H.; Valentin, F.; Wallace, I.M.; Wilm, A.; Lopez, R.; Thompson, J.D.; Gibson, T.J. and Higgins, D.G., 2007. Clustal W and Clustal X version 2.0. Bioinformatic. Vol. 23, No. 21, pp: 2947-2948.
34
Lavery, S.; Chan, T.K.; Tam, Y.K. and Chu, K.H., 2004. “Phylogenetic relationship and evolutionary of the shrimp genus Penaeus s.l. drived from mitochondrial DNA. Mol Phyl and Evol. Vol. 31, pp: 39-49.
35
Lewis, M.S. and Piez, K.A., 1964. The characterization of collagen from the skin of the dogfish shark, Squalus acanthias. J Biol Chem. Vol. 239, No. 10, pp: 3336-3340.
36
Liu, Z.; Oliveira, A.C. and Su, Y.C., 2010. Purification and characterization of pepsin-solubilized collagen from skin and connective tissue of giant red sea cucumber (Parastichopus californicus). J Agric Food Chem. Vol. 58, No. 2, pp: 1270-1274.
37
Love, R.M.; Yamaguchi, Y.; Creach, Y. and Lavety, J., 1976. The connective tissues and collagens of cod during starvation. Comp. Biochem and Physio. Part B. Vol. 55, pp: 487-492.
38
Michonneau, F.; McPherson1, S.; Mark O’Loughlin, P. and Paulay, G., 2015. More than meets the eye: diversity and geographic patterns in sea cucumbers. https://www. biorxiv.org/content/biorxiv/early/2015/01/23/014282.
39
Mizuta, S.; Yoshinaka, R.; Sato, M.; Itoh, Y. and Sakaguchi, M., 1992. Subunit composition of distinct types of collagens in the muscle of the kuruma prawn Penaeus japonicus. Comp Biochem and Physio. Vol. 102, pp: 803-811.
40
Montero, P.; Borderias, J.; Turnay, J. and Leyzarbe, M.A., 1990. Characterization of hake (Merluccius merluccius L.) and trout (Salmo irideus Gibb) collagen. J Agric Food Chem. Vol. 38, No. 3, pp: 604-609.
41
Muyonga, J.H.; Cole, C.G.B. and Duodu, K.G., 2004. Characterization of acid soluble collagen from skins of young and adult Nile perch (Lates niloticus). J Food Chem. Vol. 85, No. 1, pp:81-89.
42
Nagai, T.; Worawattanamateekul, W.; Suzuki, N.; Nakamura, T.; Ito, T. and Fujiki, K., 2000. Isolation and characterization of collagen from rhizostomous jelly fish (Rhopilema asamushi). J Food Chem. Vol. 70, pp: 205-208.
43
Nalinanon, S.; Benjakul, S.; Visessanguan, W. and Kishimura, H., 2007. Use of pepsin for collagen extraction from the skin of bigeye snapper (Priacanthus tayenus). Food Chem. Vol. 104, pp: 593-601.
44
O’Loughlin, P.M.; Paulay, G.; Vandenspiegel, D. and Samyn, Y., 2007. New Holothuria species from Australia (Echinodermata: Holothuroidea: Holothuriidae), with comments on the origin of deep and cool holothuriids. Mem Mus Vic. Vol. 64, pp: 35-52.
45
Oedjoe, M.D.R., 2017. Composition of Nutritional Content of Sea Cucumbers (Holothuroidea) in Mania Waters, Sabu Raijua Regency, East Nusa Tenggara. J Aquac Res Dev. Vol. 8, No. 7, pp: 1-3.
46
Ogawa, M.; Portier, R.J.; Moody, M.W.; Bell, J.; Schexnayder, M.A. and Losso, J.N., 2004. Biochemical properties of bone and scale collagens isolated from the subtropical fish black drum (Pogonia cromis) and sheepshead seabream (Archosargus probatocephalus). J Food Chem. Vol. 88, pp: 495-501.
47
Ozer, N.P.; Mol, S. and Varlik, C., 2004. Effect of the handling procedures on the chemical composition of sea cucumber. Turk J Fish Aquat Sci. Vol. 4, pp: 71-74.
48
Palumbi, S.; Martin, A.; Romano, S.; McMillan, W.O.; Stice, L. and Grabowski, G., 1991. The Simple Fool’s Guide to PCR. Honolulu: Department of Zoology and Kewalo Marine Laboratory, Universiti of Hawaii. 47 p.
49
Park, S.Y.; Lim, H.K.; Lee, S.; Hwang, H.C.; Cho, S.K. and Cho, M., 2012. Pepsin-solubilised collagen (PSC) from Red Sea cucumber (Stichopus japonicus) regulates cell cycle and the fibronectin synthesis in HaCaT cell migration. J Food Chem. Vol. 132, pp: 487-492.
50
Pérez-Ruzafa, A.; Entrambasaguas, L. and Bacallado, J.J., 1999. Fauna de equinodermos (Echinodermata) de los fondos rocosos infralitorales del archipiélago de Cabo Verde. Rev Acad Canar. Cienc. Vol. 11, pp: 43-62.
51
Price, A.R.G., 1983. Echinoderms of Saudi Arabia. Echinoderms of the Arabian Gulf (Persian Gulf) coast of Saudi Arabia. Fauna of Saudi Arabia. Vol. 5, pp: 28-108.
52
Sadowska, M.; Kolodziejska, I. and Niecikowska, C., 2003. Isolation of collagen from the skins of Baltic cod (Gadus morhua). J Food Chem. Vol. 81, pp: 257-262.
53
Saiki, R.; Gelfand, D.H.; Stoffel, S.; Scharf, S.J.; Higuchi, R.; Horn, G.T.; Mullis, K.B. and Erlich, H.A., 1988. Primer-directed enzymatic amplification of DNA with a thermostable DNA polymerase. Science. Vol. 239, pp: 487-491.
54
Saito, M.; Kunisaki, N. and Urano, N., 2002. Collagen as the major edible component of sea cucumber. Food Sci. Vol. 67, pp: 1319-1322.
55
Salarzadeh, A.R.; Afkhami, M.; DarvishBastami, K.; Ehsanpour, M.; Khazaali, A. and Mokhleci, A., 2012. Proximate Composition of Two Sea Cucumber Species Holothuria pavra and Holothuria arenicola in Persian Gulf. Ann Biol Res. Vol. 3, No. 3, pp: 1305-1311.
56
Samyn, Y.; Appeltans, W. and Kerr, A.M., 2005. Phylogeny of Labidodemas and the Holothuriidae (Holothuroidea: Aspidochirotida) as inferred from morphology. Zool J Linn Soc. Vol. 144, pp: 103-120.
57
Siddiqui, Y.D.; Arief, E.M.; Yusoff, A.; Hamid, S.S.A.; Norani, T.Y. and Abdullah, M.Y.S., 2013. Extraction, Purification and Physical Characterization of Collagen from Body wall of Sea cucumber Bohadschia bivitatta. Health Envi J. Vol. 4, No. 2, pp: 53-65.
58
Sikorski, Z.E.; Kolakowska, A. and Pan, B.S., 1990. The nutritive composition of the major groups of marine food organisms. In Seafood: Resources, Nutritional Composition and Preservation; Sikorski, Z.E., Ed.; CRC Press: Boca Raton, FL, USA. pp: 29-54.
59
Skierka, E. and Sadowska, M., 2007. The influence of different acid and pepsin on the extractability of collagen from the skin of Baltic cod (Gadus morhua). Food Chem. Vol. 105, pp: 1302-1306.
60
Tamura, K.; Stecher, G.; Peterson, D.; Filipski, A. and Kumar, S., 2013. MEGA6: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 6. Mol Biol Evol. Vol. 30, pp: 2725-2729.
61
Telahigue, K.; Hajji, T.; Imen, R.; Sahbi, O. and El Cafsi, M., 2014. Effects of drying methods on the chemical composition of the sea cucumber Holothuria forskali. The Open Food Sci J. Vol. 8, pp: 1-8.
62
Titterton, R. and Whatley, R., 2006. Recent marine Ostracoda from the Solomon Islands: part 1- Cypridoidea, Platycopina & Cladocopina. Journal of Micropalaeontology. Vol. 25, pp: 73-94.
63
Trotter, J.A.; Lyons-levy, G.; Thurmond, F.A. and Koob, T.J., 1995. Covalant composition of collagen fibrils from the dermis of sea cucumber, Cucumaria frondosa, a tissue with mutable mechanical properties. Comp Biochem Physiol. Part A: Physiology. Vol. 112, No. 3-4, pp: 463-478.
64
Waldschmidt, A.Ma.; Salomao, T.M.F.; Barros, E.G.;Campos, L. and Antônio, O., 1997. Extraction of genomic DNA from Melipona quadrifasciata (Hymenoptera: Apidae, Meliponinae). Braz. J. Gen, [online]. Vol. 20, No. 3.
65
Wen, J.; Hu, C. and Fan, S., 2010. Chemical composition and nutritional quality of sea cucumbers. J Sci Food Agr. Vol. 90, pp: 2469-2474.
66
Zeugolis, D. and Raghunath, L., 2011. Collagen: Materials Analysis and Implant Uses. Compr Biomater J. pp: 261-278.
67
Zeugolis, D.I.; Paul, R.G. and Attenburrow, G., 2008. Extruded collagen-polyethylene glycol fibers for tissue engineering applications. J Biomed Materi Res. Part B: Applied Biomaterials. Vol. 85, pp: 343-352.
68
Zhang, M.; Liu, W. and Li, G., 2009. Isolation and characterisation of collagens from the skin of largefin longbarbel catfish (Mystus macropterus). J Food Chem. Vol. 115, pp: 826-831.
69
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر منابع چربی جیره های غذایی (روغن های کانولا و ذرت) بر فاکتورهای رشد، بازماندگی و ترکیب اسیدهای چرب کرم نرئیس (Nereis diversicolor)
بررسی تاثیر 4 جیره غذایی فرموله شده شامل جیره های حاوی روغن گیاهی کانولا، جیره حاوی روغن گیاهی ذرت، جیره حاوی مخلوط روغن گیاهی کانولا و ذرت و جیره بدون روغن و هر یک در سه تکرار جهت تغذیه کرم N. diversicolor به مدت 2 ماه انجام شد. پس از اتمام دوره پرورش، شاخص های رشد در هر تیمار شامل افزایش زی توده کل، طول L3، ضریب رشد ویژه، افزایش وزن بدن و درصد بازماندگی اندازه گیری شد. نتایج نشان داد که اختلاف معنی داری در روند رشد کرم نرئیس تغذیه شده از جیره های حاوی روغن های مختلف با تیمار شاهد (کرم نرئیس تغذیه شده از جیره غذایی بدون روغن) مشاهده نگردید. این درحالی بودکه میزان زی توده نهایی، افزایش میزان زی توده و درصد افزایش وزن در کرم های تغذیه شده با جیره حاوی روغن های کانولا و مخلوط کانولا و ذرت نسبت به سایر تیمارها بیش تر بود. تمامی اسیدهای چرب اشباع و غیراشباع در جیره های غذایی به استثناء تیمار شاهد در بدن کرم نرئیس بیش تر از میزان آن ها در جیره غذایی بود. بیش ترین میـزان EPA و نسبت ⍵-3/⍵-6 در کرم نرئیس تغذیه شده با جیره حاوی روغن کانولا بـیش تر از جیره غذایی حاوی روغن کانولا بود. در مجموع تیمار 1 شامل جیره غذایی حاوی روغن کانولا در افزایش میزانشاخص های رشد و اسیدهای چرب غیراشباع کرم نرئیس نسبت به تیمارهای دیگر مناسب تر بود.
http://www.aejournal.ir/article_101058_d714daf58662748ecb89fd8172838273.pdf
2019-09-23
379
388
Nereis diversicolor
رشد
بازماندگی
روغن کانولا و ذرت
اسیدهای چرب غیراشباع
ذبیح اله
پژند
zpajand@gmail.com
1
موسسه تحقیقات بین المللی تاسماهیان دریای خزر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
LEAD_AUTHOR
کورش
حدادی مقدم
khkhmoghadam@gmail.com
2
موسسه تحقیقات بین المللی تاسماهیان دریای خزر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
فروزان
چوبیان
fchubian_59@yahoo.com
3
موسسه تحقیقات بین المللی تاسماهیان دریای خزر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
اسماعیل
فرزانه
s.farzaneh1391@yahoo.com
4
موسسه تحقیقات بین المللی تاسماهیان دریای خزر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
اسماعیل
حسین نیا
esmaeilhosseinnia@yahoo.com
5
موسسه تحقیقات بین المللی تاسماهیان دریای خزر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
علیرضا
عاشوری
alireza.ashouri52@gmail.com
6
موسسه تحقیقات بین المللی تاسماهیان دریای خزر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
جواد
صیادفر
j.seyadfar@areeo.ac.ir
7
موسسه تحقیقات بین المللی تاسماهیان دریای خزر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
پژند، ذ.؛ عمادی، ح.؛ نگارستان، ح.؛ پرندآور، ح.؛ چوبیان ،ف. وحدادی مقدم، ک.، 1382. بررسی امکان دستیابی به بیوتکنیک پرورش کرم نرئیس(Nereis diversicolor) . گزارش نهایی پروژه. مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 78 صفحه.
1
Adarian, A.; Patrick, F. and Uwe, W., 2009. The fatty acid composition of Nereis diversicolor cultured in an integrated recirculated system: possible implication for aquaculture. J. Aquaculture. pp: 271-276.
2
Ahlgren, G.; Blomqvist, P.; Boberg, M. and Gustafsson, I.B., 1994. Fatty acid content of the dorsal muscle an indicator of fat quality in freshwater fish, J. Fish Biology. Vol. 45, pp: 131-157.
3
AOAC. 1995. Official methods of analysis (16th edn). AOAC International Publishers, Arlington VA. USA.
4
Arsalan, M.; Sirkecioglu, N.; Bayir, A.; Arslan, H. and Aras, M., 2012. The Influence of substitution of dietary fish oil with different vegetable oils on performance and fatty acid composition of Brown Trout, Salmo trutta. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 12, pp: 575-583.
5
Batista, F.M.; Fidalgo e Costa, P.; Matias, D.; Joaquim, S.; Massapina, C.; Passos, A.M.; Pousao Ferreira, P. and Cancela da Fonseca, L., 2003. Preliminary results on the growth and survival of the polychaete Nereis diversicolor (Muller, O.F., 1776), when fed with faeces from the carpet shell clam Ruditapes decussates (L., 1758). Biol. Inst. Esp. Oceanogr. Vol. 19, pp: 443-446.
6
Bell, J.G.; McEvoy, L.A.; Este'vez, A.; Shields, R.J. and Sargent, J.R., 2003. Optimising lipid nutrition in first-feeding flatfish larvae. Aquaculture. Vol. 227, pp: 211-220.
7
Bell, J.G.; McEvoy J.; Tocher, D.R.; McGhee, F.; Campbell P.J. and Sargent, J.R., 2001. Replacement of fish oil with rapeseed oil in diets of Atlantic salmon (Salmo salar) affects tissue lipid compositions and hepatocyte fatty acid metabolism. Journal of Nutrition, Vol. 131, pp: 1535- 1543.
8
Bell, M.V.; Henderson, R.J. and Sargent, J.R., 1986. The role of polyunsaturated fatty acids in fish. Comp. Biochem. Biophys. Vol. 967, pp: 345-363.
9
Bradshaw, S.A.; O’Hara, S.C.M.; Corner, E.D.S. and Eglinton, G., 1990. Dietary lipid changes during herbivory and coprophagy by the marine invertebrate Nereis diversicolor. Vol. 70, pp: 771-787.
10
Dales, R.P., 1950. The reproduction and the larval development of Nereis diversicolor O.F. Müller. Journal of Marine Biology Association of the United Kingdom. Vol. 29, pp: 321-360.
11
Ding, Z.L.; Chen, L.Q.; Qin, J.G.; Sun, S.M.; Li, E.C.; Yu, N.; Li, M.; Chen, Y.L. and Kong, Y.Q., 2013. Molecular cloning, characterization and expression analysis of the fatty acid‐binding protein (MnFABP), involved in dietary lipid sources response in oriental river prawn, Macrobrachium nipponense. Aquaculture nutrition. Vol. 20, pp: 399-409.
12
Dinis, M.T., 1986. Quatre soleidae de l‘estuaire du Tage. Reproduction et croissance. Essai d’elevage de Solea senegalensis Kaup. Ph.D. thesis. University of Bretagne Occidentale. 348 p.
13
Fidalgoe Costa, P., 2003. the oogenic cycle of Nereis diversicolor (Annelida: polychaeta) in shallow waters environments in southwestern Portugal. Boletin Instituto Espanol de Oceanografia. Vol. 19, pp: 17-29.
14
Folch, J.; Lees, M. and Bloane-Stanley, G.H., 1957. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues. Journal Biological Chemistry. Vol. 266, pp: 497-509.
15
Gambi, M.C.; Castelli, A.; Giangrande, A.; Lanera, P.; Prevedelli, D. and Vandini, R.Z., 1994. Polychaetes of commercial and applied interest in Italy: an overview. In: Actes de la 4éme Conférence Internationale des polychètes. J. C. Dauvin, L. Laubier and D. J. Reish (eds.). Memoires du Muséum National d’ Historie Naturelle. Paris. Vol. 162, pp: 593-603.
16
Garcıa-Alonso, J.; Muller, C.T. and Hardege, J.D., 2008. Influence of food regimes and seasonality on fatty acid composition in the ragworm. Aquatic Biology. Vol. 4, pp: 7-13.
17
Gillet, P. and Torresani, S., 2003. Structure of the population and secondary production of Hediste diversicolor (O.F. Mu¨ ller, 1776), (Polychaeta, Nereidae) in the Loire estuary, Atlantic Coast, France. Estuarine Coastal Shelf Sci. Vol. 56, pp: 621-628.
18
Grémare, A.; Marsh, A.G. and Tenore, K.R., 1988. Short-term reproductive responses of Capitella sp. I (Annelida: Polychaeta) fed on different diets. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 123, pp: 147-162.
19
Koven, W.; Barr, Y.; Lutzky, S.; BenAtia, I.; Weiss, R.; Harel, M.; Behrens, P. and Tandler, A., 2001. The effect of dietary arachidonic acid (20:4n6) on growth, survival and resistance to handling stress in gilthead sea bream (Sparus aurata) larvae. Aquaculture. Vol. 193, pp: 107-122.
20
Li, Z.N.; Lin, T.T. and Yao, Z.L., 2012. Effect of Salinity on antioxidant enzyme activity and growth of Clam Cyclina sinensis. Chinese Journal of Ecology. Vol. 31, pp: 2625-263.
21
Merchie, G.; Lavens, P.; Radull, J.; Nelis, H.; De Leenheer, A. and Sorgeloos, P., 1995. Evaluation of vitamn C-enriched Artemia nauplii for larvae of the giant freshwater.
22
Morrison, W.R. and Smith, L.M., 1964. Preparation of fatty acid methyl esters and dimethylacetals from lipids with boron fluoride–methanol. Journal of Lipid Research. Vol. 5, pp: 600-608.
23
Nesto, N.; Simonini, R.; Prevedelli, D. and Da Ros, L., 2012. Effects of diet and density on growth, survival and gametogenesis of Hediste diversicolor (O.F. Müller, 1776) (Nereididae, Polychaeta). Aquaculture. Vol.9, pp: 362-363.
24
Nielsen, A.M.; Eriksen, N.T.; Lonsmann Iversen, J.J. and Ulrik Riisgard, H., 1995. Feeding, growth and respiration in polychaetes Nereis diversicolor (facultation filter feeder) and N. virens (omnivorous) a comparative study. Marine Ecology Progress Series. Vol. 125, pp: 149-158.
25
Olive, P.J.W., 1999. Polychaete aquaculture and polychaete science: a mutual synergism. Hydrobiologia. Vol. 402, pp: 175-183.
26
Palmer, P.J.; Wang, S.; Houlihan, A. and Brock, I., 2014. Nutrition status of a nereidid polycheat cultured in Sand filter of mariculture wastewater. Aquaculture Nutrition. Vol. 18, pp: 675-691.
27
Prevedelli, D. and Cassai, C., 2001. Reproduction and larval development of Perinereis rullieri Pilato in the Mediterranean Sea (Polychaeta: Nereididae). Ophelia. Vol. 54, pp: 133-142.
28
Riisgard, H.U., 1994. Filter-feeding in the polychaete N. diversicolor: A review. Aquatic Ecology. Vol. 28, pp: 453-458.
29
Sargent, J.R.; Parkes, R.J.; Mueller-Harvey, I. and Henderson, R.J., 1987. Lipid biomarkers in marine ecology. In: M.A. Sleigh, (Ed.), Microbes in the Sea, Wiley and Sons, New York. pp: 119-138.
30
Sargent, J.R.; McEvoy, L.A. and Bell, J.G., 1999. Requierments, presentation and source of polyunsaturated fatty acid in marine fish larvae feeds. Aquaculture. Vol. 177, pp: 191-199.
31
Sorgeloos, P.; Dhert, P. and Candreva, P., 2001. Use of brine shrimp, Artemia spp. In marine fish larviculture. Aquaculture. Vol. 200, pp: 147-15.
32
Tacon A.J., 1987. The nutrition and feeding of farmed fish and shrimp. 1. The essential nutrients. Training Manual. Food and Agriculture Organization. Brasilia, Brazilpp. pp: 73-84.
33
Webster, C.D. and Lim, C.E., 2002. Nutrient Requirement and Feeding of Finfish for Aquaculture. CAB International, CABI Publishing. 418 P.
34
Zenkevich, L., 1963. Biology of the seas of the USSR. Allen & Unwin. 955 p.
35
ORIGINAL_ARTICLE
تحلیل روند بهره برداری و مروری بر سیاست های مدیریتی (صید و بازسازی ذخائر) ماهیان خاویاری در استان گلستان پس از انقلاب اسلامی
ماهیان خاویاری از ارزشمندترین آبزیان جهان و دریای خـزر محـسوب می شوند. فروپاشی شوروی سابق و تقسیم نامشخص دریای خزر متاسفانه منجر به مشکلات زیست محیطی و نیز افزایش صید غیرقانونی منجر به کاهش چشمگیر گونه های با ارزش دریای خزر شده است. علی رغم ناهماهنگی های مدیریتی گوناگون، رایزنی و مدیریت جمهوری اسلامی ایران پس از پیروزی شکوهمند انقلاب اسلامی منجر به اتخاذ سیاست های یکنواخت اداره دریای خزر شده که ازجمله می توان به کنترل صید ماهیان خاویاری و افزایش بازسازی ذخایر آن ها اشاره نمود. پس از پیروزی شکوهمند انقلاب اسلامی، فعالیت های چشمگیری در این حوزه صورت گرفته است ازجمله: بازسازی ذخایر و رهاسازی بچه ماهیان به دریا، پرورش ماهیان خاویاری در آب های نامتعارف داخلی و در قفس، افزایش مراکز تحقیقاتی و دانشگاه ها با رویکرد مدیریت ذخایر ماهیان خاویاری و معرفی گونه با ارزش تاس ماهی ایرانی. در مجموع علی رغم ناهماهنگی های مدیریتی گوناگون، رایزنی و مدیریت جمهوری اسلامی ایران منجر به اتخاذ سیاست های یکنواخت اداره دریای خزر شده که ازجمله می توان به کنترل صید ماهیان خاویاری و افزایش بازسازی ذخایر اشاره نمود. از بین چند کشور حاشیه دریای خزر تنها ایران سعی در حل این بحران یعنی کاهش چشمگیر ماهیان خاویاری داشته است، فعالیت های زیادی ازجمله احداث کارگاه های تکثیر و رهاسازی ماهیان خاویاری از سوی کشور ایران در این زمینه صورت گرفته که نتیجه بسیار خوبی هم به همراه داشته است.
http://www.aejournal.ir/article_99010_0262d711acd0eec46367a108845c750b.pdf
2019-09-23
389
394
انقلاب اسلامی
بازسازی ذخائر
دریای خزر
ماهی خاویاری
صید
یدا..
سپهری
yaddollah_sepehri@yahoo.com
1
گروه معارف اسلامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
حجت الله
جعفریان
hojat.jafaryan@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
AUTHOR
سید علی اکبر
هدایتی
hedayati@gau.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
Bahmani, M., 2011. Caviar of Iran. Institute for International Research of Sturgeon. 52 p. (In Persian)
1
Belova, G., 2015. Illegal unreported and unregulated fishing in the Black Sea. International Conference Knowledge-based Organization. Vol. 2, pp: 408-412.
2
Billard, R., 2000. Biology and control of reproduction of sturgeon in fish farm. Iranian journal of fisheries seinces. Vol. 2, No. 2, pp: 1-20.
3
Christensen, J., 2016. Illegal, unreported and unregulated fishing in historical perspective. In: K. Schwerdtner Máñez and B. Poulsen (eds). Perspectives on oceans past: a handbook of marine environmental history. Dordrecht: Springer. pp: 133-53.
4
CITES (Covention on International Trade in Endangered Species of Wild Fauna and Flora) 2004. Sturgeon and paddlefish. Earth Negot. Bull. AC24. pp: 5-6.
5
Clarke, R.V. and Cornish, D.B., 2001. Rational choice. In: Paternoster, Raymond, Bachman, Ronet (Eds.), Explaining Criminals and Crime. Roxbury, Los Angeles. 24 p.
6
Clarke, S., 2007. Illegal fishing in the exclusive economic zone of Japan. MRAG, Ltd., London, UK, http://www.mrag.co.uk/Documents/IUU_Japan.pdf.
7
Cullen, F. and Agnew, R., 2006. Criminological Theory: Past to Present: Essential Readings, Oxford University Press.
8
FAO. 2011. Fish Stat-Fishery Statistics. FAO, Rome.
9
FAO. 2014. The state of world fisheries and aquaculture. FAO, Rome.
10
Iranian Fisheries Project and Development. 2003. Statistical Yearbook of Fisheries of Iran (1993-2003), International Fisheries Relations Office. (In Persian)
11
Iranian Fisheries Project and Development. 2005. Statistical Yearbook of Fisheries of Iran (2004-2005), International Fisheries Management. (In Persian)
12
Iranian Fisheries Project and Development. 2013. Statistical Yearbook of Fisheries of Iran (2002-2012), Management of International Fisheries Relations. (In Persian)
13
Iranian Fisheries Project and Development. 2014. Iranian Fisheries Statistics (2004-2014). Iranian Fisheries Organization, Deputy Directorate for Development of Management and Resources, Office of Planning and Budget, Statistics Unit. (In Persian)
14
Iranian Fisheries Project and Development. 2016. Iranian Fisheries Statistics (2006-2016). Iranian Fisheries Organization, Deputy Directorate for Development of Management and Resources, Office of Planning and Budget, Statistics Unit. (In Persian)
15
IUCN (International Union for Conservation of Nature) 2011. IUCN Red List of Threatened Species, available online at www.iucnredlist.org/apps/redlist/ search.
16
Ivanov, V.P.; Vlasenko, A.D.; Khodorevskaya, R. and Raspopov, P., 1999. Contemporary status of the Caspian sturgeons (Acipenseridae) and the problem of conservation. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 15, pp: 106-113.
17
Jafarian, H.; Jafarian, S.; Kolah Derazi, R.; Mousavi, Q. and Bivareh, M., 2017. The Economic Role of Sturgeon Fish in National Production, Golestan Province Capacity in Restoring Sturgeon Stores in the Caspian Sea and Their Economic Production. Capacity Building Conference of the Nineveh Revolutionary Guards for Realization of Resistance Economics in Golestan Province. 15 (In Persian)
18
Lagutov, V. and Lagutov, V., 2008. The Ural River sturgeons: population dynamics, catch, reasons for decline and restoration strategies. In: Lagutov, V. (Ed.), Rescue of Sturgeon Species in the Ural River Basin. pp: 193-276.
19
Öztürk, B., 2013. Some remarks of illegal, unreported and unregulated fishing in Turkish part of the Black Sea, Black Sea/Mediterranean Environment. Vol. 19, pp: 256-267.
20
Petrossian, G.A., 2015. Preventing illegal, unreported and unregulated (IUU) fishing: A situational approach. Biological Conservation. Vol. 189, pp: 39-48.
21
Petrossian, G.A. and Clarke, R.V., 2013. Explaining and controlling illegal commercial fishing: An Application of the CRAVED Theft Model. British Journal of Criminology. Vol. 54, No. 1, pp: 73-90.
22
Pikitch, E.K.; Doukakis, P.; Lauck, L.; Chakrabarty, P. and Erickson, D.L., 2005. Status, trends and management of sturgeon and paddlefish fisheries. Fish and Fisheries. Vol. 6, pp: 233-265.
23
Pires, S.F. and Clarke, R.V., 2012. Are parrots CRAVED? An analysis of parrot poaching in Mexico. Journal of Research in Crime and Delinquency. Vol. 49, No. 1, pp: 122-146.
24
Pitcher, T.; Kalikoski, D.; Pramod, G. and Short, K., 2009. Not honoring the code. Nature. Vol. 457, No. 5, pp: 658-659.
25
Pourkazemi, M., 2006. Caspian Sea sturgeon conservation and fisheries: past present and future. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, pp: 12-16.
26
Pramod, G. and Pitcher, T.J., 2006. An estimation of compliance of the fisheries of Namibia with article 7 (Fisheries Management) of the UN Code of Conduct for Responsible Fishing. University of British Columbia, Fisheries Center Research Reports.
27
Sepehri, Y., 2008. Impact of Diplomatic Solutions on Conservation of the Caspian Sea. First National Conference on Caspian Sea Fisheries Resources. Gorgan 230 p. (In Persian)
28
Sepehri, Y., 2008. The Necessity of Recognizing the Caspian Sea in Historical Adamer. First National Conference on Caspian Sea Fisheries Resources. Gorgan 229 p. (In Persian)
29
Varkey, D.A.; Ainsworth, C.H.; Pitcher, T.J.; Goram, Y. and Sumaila, R., 2010. Illegal, unreported and unregulated fisheries catch in Raja Ampat regency, Eastern Indonesia. Marine Policy. Vol. 34, pp: 228-236.
30
Worm, B. and Branch, T.A., 2013. The future of fish. Trends in Ecology and Evolution. Vol. 27, No. 11, pp: 594-599.
31
Wright, B.R.E.; Caspi, A.; Moffitt, T.E. and Paternoster, R., 2004. Does the perceived risk of punishment deter criminally prone individuals? Rational choice, self-control, and crime. Journal of Research in Crime and Delinquency. Vol. 41, No. 2, pp: 180-213.
32
Ye, Y. and Valbo-Jorgensen, J., 2012. Effects of IUU fishing and stock enhancement on and restoration strategies for the stellate sturgeon fishery in the Caspian Sea. Fisheries Research. pp: 21-133.
33
ORIGINAL_ARTICLE
ساخت سازه RNA سنجاق سری القاءکننده خاموشی ژن و بررسی مقاومت ناشی از آن در برابر ویروس برگ بادبزنی مو GFLV
استفاده از ارقام مقاوم گیاهی بهترین راه برای کنترل عوامل ویروسی می باشد. القاء مقاومت به واسطه خاموشیRNA یک روش خوب برای ایجاد ارقام مقاوم به ویروس ها می باشد. ویروس برگ بادبزنی مو (GFLVGrapevine fanleaf virus) عامل یکی از مخرب ترین بیماری های ویروسی مو در سراسر دنیا است. به منظور بررسی امکان ایجاد مقاومت به GFLV مو با استفاده از سیستم القاء مقاومت به واسطه RNA، از توالی نوکلئوتیدی دو ژن این ویروس برای ساخت سازه سنجاق سری استفاده شد که در آن قطعه ای از هر ژن به طور جداگانه در جهت سنس و آنتی سنس در دو طرف یک ناحیه اینترونی و در مقابل 35SCaMV در پلاسمید pGA482G قرار گرفت. جهت تراریختیگیاهان Nicotiana benthamiana از سیستم Agrobacterium tumefaciens استفاده شد. پس از تأیید انتقال ژن، گیاهان تراریخت به منظور ارزیابی مقاومت نسبت به GFLV، مایه زنی مکانیکی شدند. 10 روز پس از مایه زنی ویروس سه نوع واکنش مقاومت، حساسیت و تأخیر در بروز علایم در گیاهان مایه زنی شده مشاهده شد. آزمون الایزا نیز عدم حضور ویروس را در گیاهان مقاوم تراریخت تأیید کرد. در این گیاهان حتی یک ماه پس از مایه زنی، هیچ گونه علایم ویروسی مشاهده نشد. درحالی که گیاهان تراریختی که حضور ویروس در آن ها با آزمون الایزا ردیابی شد، علایم موزاییک را یک هفته پس از مایه زنی و مشابه تیپ وحشی گیاهان مایه زنی شده با GFLV نشان دادند. نتایج این تحقیق نشان داد که سازه به کار رفته برای القاء مقاومت کارایی بالایی داشته و می توان از آن برای ایجاد مقاومت در ارقام مختلف مو نسبت به GFLV استفاده کرد.
http://www.aejournal.ir/article_100406_7f720e4ea885d0b18217329692b78ea1.pdf
2019-09-23
395
406
تراریخت
خاموشی ژن
سنجاق سر
ویروس برگ بادبزنی مو
سمیرا
پاکباز
samira.pakbaz@gmail.com
1
گروه گیاه پزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه لرستان، خرم آباد، ایران
LEAD_AUTHOR
پاکباز، س.؛ پژوهنده، م.؛ عینی گندمانی، ا. و سخندان، ن.؛ 1397. القاء مقاومت به ویروس برگ بادبزنی مو (GFLV) بهروش.RNA Silencin مجله پژوهشهای سلولی و مولکولی. دوره 31، شماره 2، صفحات 268 تا 278.
1
Bardonnet, N.; Hans, F.; Serghini, L. and Pinck, L., 1994. Protection against virus infection in tobacco plants expressing the coat protein of Grapevine fanleaf virus. Plant Cell Reports. Vol. 13, pp: 357-360.
2
Baulcombe, D.C., 1996. Mechanisms of pathogen derived resistance to viruses in transgenic plants. Plant ell. Vol. 8, pp: 1833-1844.
3
Dasgupta, V.; Malathi, G. and Mukherjee, S.K., 2003. Genetic engineering for virus resistance. Current Science. Vol. 84, pp: 3-10.
4
Dawson, W. and Hilf, M.E., 1992. Host-range determinants of plant viruses. Annu Rev plant physiol plant Mol Biol. Vol. 43, pp: 527-555.
5
Fuchs, M. and Gonsalves, D., 2007. Safety of virus-resistant transgenic plants two decades after their introduction: lessons from realistic field risk assessment studies. Annual Review of Phytopathology. Vol. 45, pp: 173-202.
6
Gambino, G.; Perrone, I.; Carra, A.; Chitarra, W.; Boccacci, P.; Marinoni, D.; Barberis, M.; Maghuly, F.; Laimer, M. and Gribaudo, I., 2009. Transgene silencing in grapevines transformed with GFLV resistance genes: analysis of variable expression of transgene, siRNAs production and cytosine methylation. Transgenic Research. Vol. 19, No. 1, pp: 17-27.
7
Gottula, J.; Berthold, F.; Labarile, R.; Gutting, H.; Demangeat, G.; Cantilina, K. K.; Vigne, E.; Marmonier, A.; Lemaire, O.; Ritzenthaler, C.; Schmitt-Keichinger, C. and Fuchs, M., 2014. Grapevine fanleaf virus and a virus-induced gene silencing and protein expression vector for Vitis spp. Dissertation of Doctor of Philosophy. 282 p.
8
Jacqumond, M.; Teycheney, P.Y.; Carrere, I.; Navas Castillo, J. and Tepfer, M., 2001. Resistance phenotypes of transgenic tobacco plants expressing different Cucumber mosaic virus (CMV) coat protein genes. Molecular Breeding. Vol. 8, pp: 85-94.
9
Jardak-Jamoussi, R.; Winterhagen, P.; Bouamama, B.; Dubois, C.; Mliki, A.; Wetzel, T.; Ghorbel, A. and Reustle, G., 2009. Development and evaluation of a GFLV inverted repeat constructfor genetic transformation of grapevine. Plant Cell, Tissue and Organ Culture. Vol. 97, pp:187-196.
10
Kawchuke, L.M.; Martin, R.R. and Macpherson, P., 1991. Sense and antisense RNA mediated resistance to Potato leafroll virus in Russet Burbank potato plants. Molecular Plant-Microbe interaction. Vol. 4, pp: 247-253.
11
Kerschen, A.; Napoli, C.A.; Jorgensen, R.A. and Muller, A.E., 2004. Effectiveness of RNA interference in transgenic plants. Federation of European Biochemical Societies Letters. Vol. 566, pp: 223-228.
12
Kim, K.; Eamens, A. and Waterhouse, P., 2011. RNA Processing Activities of the Arabidopsis Argonaute Protein Family. RNA Processing. Vol. 8, pp: 137-156.
13
Koteer, J.M.; Matzke, M.A. and Meyer, P., 1999. Listening to the silent genes: transgenic silencing, gene regulation and pathogen control. Trend Plant Science. Vol. 4, pp: 340-347.
14
Lai-Kee-Him, J.; Schellenberger, P.; Dumas, C.; Richard, E.; Trapani, S.; Komar, V.; Demangeat, G.; Ritzenthaler, C. and Bron, P., 2013. The backbone model of the Arabis mosaic virus reveals new insights into functional domains of nepovirus capsid. Journal of Structural Biology. Vol. 182, pp:19-29.
15
Lennefors, B.L.; Savenkov, E.I.; Bensefelt, J.; Wremerth, E.; Roggen, P.; Tuvesson, S.; Valkonen, J.P.T. and Gielen, J., 2006. dsRNA- mediated resistance to Beet necrotic yellow vein virus infections in sugar beet (Beta vulgaris L. ssp. vulgaris). Mol breeding. Vol. 18, pp: 313-325.
16
Lindbo, J.A. and Dougherty, W.G., 1992. Untranslatable transcripts of Tobacco etch virus coat protein gene sequence can interfere with Tobacco etch virus replication in transgenic plants and protoplast. Virology. Vol. 189, pp: 725-733.
17
Martelli, G.P., 2014. Directory of virus and virus-like diseases of the grapevine and their agents. Journal of Plant Pathology. Vol. 96, No. S1, pp: 1-4.
18
Murashige, S. and Skoog, M., 1962. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Plant Physiology. Vol. 15, pp: 473-497.
19
Naraghi-Arani, P.; Duabert, S. and Rowhani, A., 2001. Quasispecies nature of the genome of Grapevine fanleaf virus. Journal of General Virology. Vol. 82, pp: 1791-1795.
20
Palukaitis, P. and Carr, J.P., 2008. Plant resistance responses to viruses. Journal of Plant Pathology. Vol. 90, pp: 153-171.
21
Reustle, G.; Winterhagen, P.; Jardak-Jamoussi, R.; Cobanov, P.; Dubois, C.; Manthey, T.; Wetzel, T.; Ghorbel, A.; Brendel, G.; Ipach, U. and Krczal, G., 2006. Resistance against nepoviruses: molecular and biological characterization of transgenic tobacco and grapevine plants. Extended abstracts of the 15th Meeting of ICVG, Stellenbosch 2006, pp: 59-60.
22
Rovere, C.V. and Del vas, M.H.E., 2002. RNA mediated virus resistance. Current Opinion in Biotechnology. Vol. 13, pp: 167-172.
23
Smith, N.A.; Singh, S.P.; Wang, M.B.; Stoutjesdijk, P.A.; Green, A.G. and Waterhouse, P.M., 2000. Total silencing by intron-spliced hairpin RNAs. Nature. Vol. 407, pp: 319-320.
24
Vancanneyt, G.; Schmidt, R.; O'Connor-Sanchez, A.; Willmitzer, L. and Rocha-Sosa, M., 1990. Construction of an intron-containing marker gene: Splicing of the intron in transgenic plants and its use in monitoring early events in Agrobacterium-mediated plant transformation. Molecular Genetics and Genomics. Vol. 220, pp: 245-250.
25
Vazquez, R.C.; Del Vas, M. and Hopp, H.E., 2002. RNA- mediated virus resistance. Current Opinion in Biotechnology. Vol. 13, pp: 167-172.
26
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر غلظت های متفاوت استارتر و اسانس گیاه کاکوتی بر روی ویژگی های فیزیکوشیمیایی و میکروبی دوغ تهیه شده از شیر میش
دوغ یکی از نوشیدنیهای تخمیری شیری است که با عطر و طعمهای متفاوت در دنیا تولید میگردد. در این پژوهش از شیر میش که ارزش تغذیهای بالایی دارد در تولید دوغ و از درصدهای متفاوت استارتر و اسانس گیاه کاکوتی که نسبت به سایر افزودنیها مانند نعناع و پونه از مزیتهای بالاتری برخوردار است، استفاده شد. در این تحقیق 5 فرمولاسیون دوغ تولید شده از شیر میش با غلظت های متفاوت 0/0125 درصد و 0/025 درصد استارتر و غلظتهای متفاوت 0/01 درصد و 0/005 درصد اسانس کاکوتی انتخاب شد. نتایج نشان داد pH همه تیمارها در طی نگهداری 21 روزه کاهش پیدا کردند و به موازات آن اسیدیته برحسب دورنیک تمام تیمارها با گذشت زمان افزایش نشان داد و میزان ماده خشک ومیزان رسوب نیز در تمام تیمارها در طی دوره نگهداری افزایش پیدا کرد. در بررسیهای میکروبی نیز، شمارش باکتریهای استارتر (استرپتوکوکوس ترموفیلوس و لاکتوباسیلوس اسیدوفیلوس) مشخص شد که با گذشت زمان میزان باکتریها کاهش یافت. باتوجه به نتایج کسب شده از این پژوهش تیمار C حاوی 0/025 درصد استارتر- 0/005 درصداسانس کاکوتی به عنوان تیمار برتر معرفی گردید.
http://www.aejournal.ir/article_101079_26d6dc7b7c498f807b77d5ffe24145c8.pdf
2019-09-23
407
412
دوغ
اسانس کاکوتی
استارتر کالچر
خصوصیات فیزیکو شیمیایی
خصوصیات میکروبی
شیر میش
سمیه
محمدی عمو دیزج
s.mohamadi8497@yahoo.com
1
گروه علوم و صنایع غذایی، واحد ورامین-پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
علیرضا
شهاب لواسانی
shahabam20@yahoo.com
2
مرکز تحقیقات فناوری های نوین تولید غذای سالم، واحد ورامین-پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
LEAD_AUTHOR
علی
اکبریان موغاری
akbarian_am@yahoo.com
3
مرکز تحقیقات صنایع شیر ایران، تهران، ایران
AUTHOR
باباخانلو، م.؛ میرزا، م.؛ سفیدکن، ف.؛ احمدی، ل.؛ برازنده، م. و عسگری، ف.، 1377. بررسی ترکیبهای تشکیلدهنده اسانس کاکوتی کوهی. نشریه تحقیقات گیاهان دارویی. شماره 2، صفحات 10 تا 114.
1
سجادی، س.؛ قاسمی دهکردی، ن. و بلوچی، م.، 1382. بررسی موارد متشکله اسانس اندامهای هوایی گیاه کاکوتی کوهی. نشریه پژوهش و سازندگی. شماره 8، صفحات 1 تا 9.
2
طباطبائی، ف.؛ مرتضوی، س.ع. و کوچکی، آ.، 1391. بررسی و مقایسه اثر ترکیبات بازدارنده طبیعی در جلوگیری از رشد استافیلوکوکوس اورئوس در نمونه دوغ صنعتی با استفاده از روش سطح پاسخ. نشریه پژوهش و نوآوری در علوم و صنایع غذایی. سال 1، جلد 3، صفحات 175 تا 186.
3
عزیزی، گ.، 1383. اثر تنش خشکی و شوری بر روی خصوصیات کمی آویشن شیرازی، کاکوتی، آویشن باغی و کلپوره. پایاننامه کارشناسی ارشد زراعت. دانشگاه فردوسی مشهد.
4
کاراژیان، ر.، 1384. بررسی اثر اسانس و عصاره کاکوتی کوهی بر باکتریهای پاتوژن و امکان افزایش زمان ماندگاری ماست در اثر افزودن آن ها. پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشگاه فردوسی مشهد.
5
مظفریان،و.،1375. فرهنگ نامهای گیاهان ایران. انتشارات فرهنگ معاصر تهران.
6
Atamer, M. and Gorsel, A., 1999. Study on the utilization of pectin in manufacture of long life Ayran. GIDA. Vol. 24, pp: 119-126.
7
Chachoyan, A.A. and Oganesyan, G.B., 1966. Antitumor activity of some spices of the family Lamiaceae. Rastitelnye Resursy. Vol. 32, No. 4, pp: 59-64.
8
Chitsaz, M.; Barton, M.; Bazargan, M. and Kamallnejad, M., 2007. Essential oil composition and antibacterial effects of ziziphora clinopodioides. 17th European Congress of Clinical Microbiology and Infectious Diseases and 25th International Congress of Chemotherapy. pp: 15-23.
9
Verluyten, J.; Leroy, F. and Vuyst, L.D., 2004. Effects of Different Spices Used in Production of Fermented Sausages of Growth of and Curvacin a Production by Lactobacillus curvatus LTH 1174. Journal of Appl. andEnviron. Microbiol. Vol. 70, No. 8, pp: 4807-4813.
10
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه آسیب شناسی انگل Diclobothrium armatum در آبشش فیل ماهیان پرورشی در گیلان
دیکلوبوتریوم آرماتوم نسبت به میزبان خود اختصاصی بوده و باعث آسیبهای مختلف شدید در آبشش، اختلال در سیستم تنفسی،کاهش اشتها، لاغری و تلفات مزمن در بچه ماهیان خاویاری می شوند. هدف از این مطالعه شناسایی آسیب های مختلف ناشی از تهاجم انگل در آبشش ماهیان خاویاری بوده است. در این تحقیق 40 قطعه از گونه فیل ماهی با وزن های 50 تا 150 گرم از اوائل خرداد ماه تا پایان شهریور 1397 به صورت تصادفی از مزارع پرورشی خاویاری صید گردیدند. ماهیان با همان شرایط زیستی به صورت زنده به آزمایشگاه بهداشت آبزیان انتقال داده شدند. معاینه بالینی آزمایشگاهی روی پوست، باله ها و تیغه های آبشش انجام گرفت. در آبشش ها پس از مشاهده انگل ها، آن ها را جداسازی کرده و جهت تثبیت در محلول فرمالین 4 درصد قرار داده شدند و سپس کار آبگیری، شفاف سازی و رنگ آمیزی آن ها با روش آلوم کارمین انجام گرفت. هم زمان پس از جداسازی انگل ها، از بافت های آبشش نیز نمونه گیری کرده و جهت تثبیت در محلول بوئن انتقال داده شدند. آنگاه پس از آبگیری، شفاف سازی، پارافینه کردن، برش دادن، چسباندن روی لام با روش هماتوکسیلین ائوزین رنگ آمیزی گردیدند. نتایج مشاهدات بالینی آبشش در ماهیان زنده: ترشحات موکوسی، چسبندگی در تیغه های آبشش و پرخونی را نشان می داد. نتایج مطالعات میکروسکوپی در نمونه های بافت آبشش آلوده به انگل: چسبندگی در تیغه های آبشش ثانویه، دژنرسانس، ادم، نکروز، پرخونی، خونریزی، هیپرپلازی وتخریب بافت های آبشش را نشان داد.
http://www.aejournal.ir/article_101127_f111b68036f6e3aef62e8f84a1ab49f7.pdf
2019-09-23
413
418
دیکلوبوتریوم آرماتوم
آبشش
فیل ماهی
آسیب شناسی
محمد
رهاننده
rahanandeh1340@gmail.com
1
گروه شیلات و آبزیان، واحد بهدان، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی گیلان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی ایران، رشت، ایران
LEAD_AUTHOR
مهسا
رهاننده
mahsa.rahanandeh@gmail.com
2
گروه ژنتیک، واحد تنکابن، دانشگاه آزاد اسلامی، تنکابن، ایران
AUTHOR
علی
حلاجیان
alihallajian@gmail.com
3
انستیتو بین المللی ماهیان خاویاری، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
مهران
آوخ کیسمی
dr.keysami@gmail.com
4
گروه شیلات و آبزیان، واحد بهدان، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی گیلان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی ایران، رشت، ایران
AUTHOR
Arafa, S.Z.; El-Naggar M.M. and El-Abbassy, S.A., 2009. Mode of attachment and histopathological effects of Macrogyrodactylus clarii, a monogenean gill parasite of the catfish Clarias gariepinus, with a report on host response. Acta Parasitologica. Vol. 54, pp: 103-112.
1
Bahmani, M.A.; Yousefi Jourdehi, R.; Kazemi, R.; Pourdehghani, S.; Hallajian, A.; Dejhandian, J. and Jalilpoor, M., 2009. Seasonal fluctuations of testosterone (T), 17α- hydroxy progesterone (17α -OHP), 17β- estradiol (E2) during sexual maturation in Stellate sturgeon, Acipenser stellatus. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 4, pp: 7-16
2
Bahmani, M.A.; Kazemi, R.; Yousefi Jourdeh, R.; Hallajian, A.; Pourdehghani, S. and Dejhandian, J., 2007. Final report on investigation of possibilty on artificial propagation in farmed Stellate sturgeon, Acipenser stellatus (breeding, artificial propagation and fingerling production of farmed sturgeon). Published in: Iranian Fisheries Research Organization. 176 p.
3
Barannikova, I.A.; Bayounova, L.V. and Semenkova, T.B., 2004. Serum levels of testosterone, 11- ketotestosterone and estradiol - 17 in three species of sturgeon during gonadal Development and final maturation induced by hormonal treatment. Journal of Fish Biology. Vol. 64, pp: 1330-1338.
4
Boscari, E.; Barmintseva, A.; Pujolar, J.M.; Doukakis, P.; Mugue, N. and Congiu, L., 2014. Species and hybrid identification of sturgeon caviar: a new molecular approach to detect illegal trade Molecular Ecology Resources. Vol. 14, No. 3, pp: 489-498.
5
Bronzi, P. and Rosenthal, H., 2014. Present and future sturgeon and caviar production and marketing: A global market overview Applied Ichthyology. Vol. 30, No. 6, pp: 1536-1541.
6
Chai, J.Y.; Darwin Murrell, K. and Lymbery, A.J., 2005. Fish borne parasitic zoonoses: Status and issues. International Journal for Parasitology. Vol. 35, pp: 1233-1254.
7
Gussive, A.V.; alali, B. and Molnar, K., 1993. New and Known Spcies of Dactyloyrus Diesing, 1850 (Monogenea; Doctylogyridae) From Iranian freshwater fishes. Systemic Parasitology. Vol. 25, pp: 221-226.
8
Hamzeh, R.E.; Moslemi, M.; Karaminasam, M.; Khanlar, M.A.; Faizbakhsh, M. and Batebi Navai Tahergorabi, M., 2015. Amino Acid Composition of Roe from Wild and Farmed Beluga Sturgeon (Huso huso).
9
Hung, S.S.O. and Deng, D.F., 2002. Sturgeon Acipenser spp. In Lim, C. and Webster, C.D. (eds). Nutrient requirements and feeding of finfish for aquaculture. CAB Inter. Pub.
10
Jalali, B., 1995. Monogenean parasites of fresh water fish in Iran, Veterinavy Medical Research institute, Hungarian Academy of Sciences, Budapest Humgary. pp: 1-32.
11
Jalali, B. and Barzegar, M., 2006. Fish parasites in zarivar Lake. J. Agric. Sci. Technol. Vol. 8, pp: 47-58.
12
Kaur, P. and Shrivastav, R., 2014. Histological effect of monogenean parasites on gills of freshwater carp, sEJBB. Vol. 2, No. 2, pp: 50-53.
13
Klinger, R. and Francisbyd, R., 2005. Introduction to fresh water fish parasites. University of Florida. pp: 162-163.
14
Malmberg, G.; Collins, C.; Cunnigham, C. and Jalali, B., 2007. Gyrodactylus derjavinoides sp.nov. (Monogenea, Platyhelminthes) on Salmon trutta trutta L. and G. Derjavini Mikailov, 1975 on s.t. Caspius kessler, two different species of Gyrodactylus. Combned morphological and molecular investigations. Acta parasitology. Vol. 52, No. 2, pp: 89-103.
15
Molnar, K., 1994. Effect of decreased water oxygen content on common carp fry with D. vastator (monogenea) infection of varing severity. Diseases of Aquatic Organism. Vol. 20, pp: 153-157.
16
Noga, E.J., 2010. Fish disease: diagnosis and Treatment, Treatment, university press All rights reserved, Two. Edi. pp: 81-92.
17
Pavlovsky, E.N., 1964. Key to the parasites of fresh water fishes of the USSR. Translation from Russian by Palestine Program for scientific translation, Jerusalem.
18
Pinky, K. and Rekha, S., 2014. Histological effect of monogenean parasites on gills of freshwater carps, European Journal of Biotechnology and Bioscience. Vol. 2, No. 2,
19
pp: 50-53.
20
Rahanandeh, M.; Sharifpour, I.; Jalali, B.; Kazemi, R.; Aminian, B. and Shafiei S., 2010. Survey on Dactylogyrus in Caspian Frisian roach (Rutilus frisii kutum) caused by Dactylogyrus frisii. Global veterinaria. Vol. 4, pp: 515-518.
21
Rahanandeh, M.; Mobedi, I.; Aghazadeh Meshgi, M.; Jalali, B.; Aminian, B. and Shafiei, S., 2011. Occurrence and Intensity rate of Internal Metazoan parasites in Rutilus frisii and the first report Dioctophyma renale of (Nematoda: Dioctophymidea) in Iran. World Journal of zoology. Vol. 6, pp: 91-97.
22
Raymakers, C., 2002. International Trade in Sturgeon and Paddlefish Species the Effect of CITES listingInternational Review of Hydrobiology. Vol. 87, No. 5-6, pp: 525-537,
23
Roberts, R.J., 2012. Fish Pathology, Bailliere Tindall, London. England. PP: 180- 200
24
Shamsi, sh. and jalali, B., 2001. Monogenean parasites of caspia Frisian Roach (Rutilus frisii kutum) in sefid Rood River and Caspian Sea. Irania Journal of fisheries Seciences. Vol. 30, pp: 19-24.
25
Shamsi, Sh. and Jalali, B., 1997. First record of some freshwater fish parasites (monogenea) in Iran. 3rd international symposium on Monogenea. Brno, Czech Republic. 76 p.
26
Webster, C.D. and Lim, C.E., 2002. Nutrient Requirement and Feeding of Finfish for Aquaculture. CAB International, CABI publishing. 418 p.
27
Woo, P.T.K., 2011. fish Diseoses and Disorders, Volumel, Protozoan and Metozoam Parasites, CAB international, U.K. pp: 25-280.
28
Zhigang, X.; Cuijuan, N.; Zuobing, Z. and Bao. L., 2006. Dietary ascorbic acid may be necessary for enhancing the immune response in Siberian sturgeon (Acipenser baerii), a species capable of ascorbic acid biosynthesis. Comparative Biochemistry and Physiology, Part A. Vol. 145, pp: 152-157.
29