ORIGINAL_ARTICLE
کمیسازی اثر عوامل محیطی بر توزیع خرس قهوهای (Ursus arctos) در جنگلهای بلوط زاگرس (مطالعه موردی: منطقه حفاظتشده قلاجه)
منطقه حفاظتشده قلاجه بهعنوان یکی از مهمترین زیستگاههای جنگلی زاگرس در استان کرمانشاه برای بزرگترین گوشتخوار ایران شناخته میشود. این مطالعه باهدف مدلسازی پراکنش خرس قهوهای (Ursus arctos) با روش حداکثر آنتروپی (مکسنت) در منطقه حفاظتشده قلاجه انجام گرفت. به این منظور 168 نقطه حضور در بازه یکساله (96-97) برای مطالعه زیستگاه گونه جمعآوری شدند. تعداد 13 متغیر محیطزیستی شامل جهت شیب، رطوبت، ارتفاع، فاصله از نقاط حضور عشایر، فاصله از آبراهه، فاصله از باغ، فاصله از رودخانه، فاصله از جاده، فاصله از روستا، اکوتون، شاخص بار گرمایی، شاخص تراکم پوشش گیاهی و شیب بهعنوان متغیر اکولوژیک تأثیرگذار بر روی گونه استفاده شدند. اعتبار مدل از سطح زیر منحنی (AUC) اندازهگیری شد که مقدار آن برابر 0/86 محاسبه گردید که نشاندهنده قابلیت بالای مدل در تفکیک زیستگاه مطلوب و نامطلوب از یکدیگر است، همچنین نتایج حاصل از بررسی اهمیت متغیرهای زیستگاهی با استفاده از تحلیل جک نایف نشان داد که مهمترین متغیرها در انتخاب زیستگاه خرس قهوهای در منطقه حفاظتشده قلاجه به ترتیب فاصله از رودخانه، فاصله از باغ و شاخص تراکم پوشش گیاهی هستند.
http://www.aejournal.ir/article_101262_1a7365c4d3812706c60fceb3e5574958.pdf
2019-12-22
1
8
خرس قهوهای
منطقه حفاظتشده
قلاجه
مطلوبیت زیستگاه
کرمانشاه
سامان
فلاحتی
samanfalahati1992@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
AUTHOR
کامران
شایسته
ka_shayesteh@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
LEAD_AUTHOR
پیمان
کرمی
peymankarami1988@gmail.com
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
AUTHOR
ایمانی، ج.؛ کابلی، م.؛ نظری زاده دهکردی، م.؛ رسولی نسب، ف.؛ احمدی، م. و خسروی شرف آبادی، ر.، 1395. تغییرات ریخت شناختی جمجمه خرس قهوهای (Ursus arctos) در دو رشته کوه البرز و زاگرس در ایران. زیستشناسی کاربردی. دوره 29، شماره 2، صفحات 5 تا 22.
1
پاداش، ا.؛ نبوی، م.؛ دهزاد، ب.؛ جوزی، ع. و مرادی، ن.، 1389. برنامهریزی استراتژیک توسعه حفاظت محیطزیست در مناطق حفاظتشده دریایی (مطالعه موردی منطقه حفاظتشده مند استان بوشهر). پژوهشهای محیطزیست. دوره 1، شماره 1، صفحات 53 تا 66.
2
زارعی، ع.؛ عابدی، س.؛ محمودی، م. و پیروی لطیف، ش.، 1394. ارزیابی زیستگاه زمستانخوابی خرس قهوهای سوری (Ursus arctos syriacus) با استفاده از مدلسازی خطی تعمیمیافته (GLM) و رگرسیون وزنی جغرافیایی (GWR) در جنوب ایران. بومشناسی کاربردی. سال 4، شماره 14، صفحات 75 تا 85.
3
ضیایی، ه.، 1390. راهنمای صحرایی پستانداران ایران. چاپ دوم، کانون آشنایی با حیات وحش تهران. 405 صفحه.
4
عبیداوی، ز.؛ رنگزن، ک.؛ میرزایی، ر. و کابلی زاده، م.، 1395. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه خرس قهوهای (Ursus arctos) در منطقه حفاظتشده شیمبار، استان خوزستان. فصلنامه بومشناسی کاربردی. دوره 5، شماره 18، صفحات 61 تا 72.
5
عطایی، ف.؛ کرمی، م. و کابلی، م.، 1391. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه تابستانه خرس قهوهای (Ursus arctos syriocus) در منطقه حفاظتشده البرز جنوبی .محیطزیست طبیعی. دوره 65، شماره 2، صفحات 235 تا 245.
6
غلامحسینی، ق.؛ اسماعیلی، ح.؛ کمی، ق.؛ ابراهیمی، م. و تیموری، آ.، 1389. بررسی مهرهداران هم زیستگاه با خرس قهوهای (Ursusarctos) در استان فارس در راستای برنامهریزی و مدیریت بهتر زیستگاههای اینگونه. فصلنامه علوم زیستی دانشگاه آزاد اسلامی واحد زنجان. جلد 3، شماره 1، صفحات 17 تا 28.
7
فلاحتی، س.، 1397. بررسی وضعیت زیستگاه خرس قهوهای (Ursus arctos) از منظرسیمای سرزمین در منطقه حفاظتشده قلاجه. پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشگاه ملایر. 125صفحه.
8
کوچالی، ف.، 1396. ارزیابی زیستگاه خرس قهوهای بهمنظور بررسی و شناسایی زیستگاههای مطلوب مطالعه موردی جنگلهای هیرکانی در استانهای گلستان، گیلان و مازندران. پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشکده محیطزیست کرج. 118صفحه.
9
کمایی، م.، 1392. ارزیابی اثر کاربری اراضی بر مطلوبیت زیستگاه خرس قهوهای در منطقه حفاظتشده البرز مرکزی. پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان. 110 صفحه.
10
مهندسین مشاور رویان. 1395. طرح مدیریت منطقه حفاظتشده قلاجه. سازمان حفاظت محیطزیست، دفتر زیستگاهها و امور مناطق.
11
نظامی، ب.، 1387. بومشناسی خرس قهوهای در محدوده امن البرز مرکزی، پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشگاه علوم و تحقیقات تهران، 100ص.
12
نظامی، ب.؛ عطایی، ف.؛ حیدری، ح.؛ علیزاده شعبانی، ا.؛ اسحاقی، ر. و نعیمایی، ر.، 1396. مناطق کلیدی جهت حفاظت از خرس قهوهای (Ursus arctos) ماده در البرز مرکزی. فصلنامه زیستشناسی جانوری تجربی. سال 6، شماره 3، صفحات 127 تا 141.
13
همامی، م.؛ اسماعیلی، س. و سفیانیان، ع.، 1393. پیشبینی پراکنش یوزپلنگ آسیایی، پلنگ ایرانی و خرس قهوهای در پاسخ به متغیرهای محیطی در استان اصفهان. فصلنامه بومشناسی کاربردی. سال 4، شماره 13، صفحات51 تا 63.
14
Anderson, M.C.; Watts, J.M.; Freilich, J.E.; Yool, S.R.; Wakefield, G.L.; Mccaulery, J.F. and Fahnestock, A., 2000. Regression tree modeling of desert tortoise habitat in the central Mojave Desert. Ecological Application Jur7. Vol. 3, pp: 890-798.
15
Gutleb, B. and Ziaie, H., 1999. On the distribution and status of the Brown Bear, Ursus arctos, and the Asiatic Black Bear, U. thibetanus, in Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 18, No. 1, pp: 5-8.
16
Haghani, A.; Aliabadian, M.; Sarhangzadeh, J. and Setoodeh, A., 2016. Seasonal habitat suitability modeling and factors affecting the distribution of Asian Houbara in East Iran. Heliyon. 2(8), - -IUCN. 2017. The IUCN Red List of Threatened Species, Version 2016-1. Available at: www.iucnredlist.org. (Accessed: 10 July 2017). e00142.
17
Laramie, A., 2004. Species assessment foe Gray Wolf (Canis lupus) in Wyoming Carron Meaney. Wyoming Natural Diversity Database. University of Wyoming. Dept Ltd. 186 p.
18
Martin, J.; Basille, M.; Van Moorter, B.; Kindberg, J.; Allainé, D. and Swenson, J. E., 2010. Coping with human disturbance: Spatial and temporal tactics of the brown bear (ursus arctors). Canadian Journal of Zoology. Vol. 88, pp: 875-883.
19
Mateo-Sánchez, M.C.; Balkenhol, N.; Cushman, S.; Pérez, T.; Domínguez, A. and Saura, S., 2015. Estimating effective landscape distances and movement corridors: comparison of habitat and genetic data. Ecosphere. Vol. 6, No. 4, pp: 1-16.
20
McLoughlin, P.D.; Ferguson, S.H. and Messier, F.O., 2000. Intraspecific variation in home range overlap with habitat quality: a comparison among brown bear populations. Evolutionary Ecology. Vol. 14, No. 1, pp: 39-60.
21
Mertzanis, G.; Kallimanis, A.; Kanellopoulos, N.; Sgardelis, S.; Tragos, A. and Aravidis, I., 2008. Brown bear (Ursus arctos) habitat use patterns in two regions of northern Pindos, Greece management implications. Journal of Natural History. Vol. 42, No. 5, pp: 301-315.
22
Morrison, M.; Marcot, L. and Mannan, R., 2012. Wild life habitat relationships Concepts and applications. University of Wisconsin Press Ltd. Madison. Wisconsin, USA. 130 p.
23
Nawaz, M.A., 2008. Ecology, genetics and conservation of Himalayan brown bears, PhD Thesis, Department of Ecology and Natural Resource Management, Norwegian University of Life Sciences. 224 p.
24
Narumalani, S.; Mishra, D.R.M. and Rothwell, R.G., 2004. Change detection and landscape metrics for inferring anthropogenic processes in the greater EFMO area. Remote Sensing of Environment. Vol. 91, pp: 478-489.
25
Piédallu, B.; Quenette, P. Y.; Bombillon, N.; Gastineau, A.; Miquel, C. and Gimenez, O., 2017. Determinants and patterns of the endangered brown bear Ursus arctos habitat use in the French Pyrenees revealed by occupancy modeling. Animal Conservation. Vol. 21, No. 4, pp: 352-362.
26
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological Modelling. Vol. 190, pp: 231-259.
27
Posillico, M.; Meriggi, A.; Pagnin, E.; Lovari, S. and Russo, L., 2004. A habitat model for brown bear conservation and land use planning in the central apennines. Journal of Biological Conservation. Vol. 118, No. 2, pp: 141-150.
28
Simberloff, D., 1999. Biodiversity and bears: A conservation paradigm shift. Ursus.Vol. 11, pp: 25-31.
29
Skuban, M.; Finďo, S.; Kajba, M.; Koreň, M.; Chamers, J. and Antal, V., 2017. Effects of roads on brown bear movements and mortality in Slovakia. European Journal of Wildlife Research. Vol. 63, No. 5, 82 p.
30
Su, J.; Aryal, A.; Hegab, I. M.; Shrestha, U. B.; Coogan, S. C.; Sathyakumar, S. and Fu, H., 2018. Decreasing brown bear (Ursus arctos) habitat due to climate change in Central Asia and the Asian Highlands. Ecology and Evolution.
31
Zaniewski, A.E.; Lehmann, A. and Overton, J.M., 2002. Predicting species spatial distributions using presence-only data: a case study of native New Zealand ferns. Ecological modelling. Vol. 157, No. 2, pp: 261-280.
32
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی عادات غذایی بهاره خرس قهوه ای (1758 Ursus arctos syriacus Linnaeus,) در جنگل های هیرکانی (مطالعه موردی: پارک ملی گلستان)
شناخت عادات غذایی حیوانات برای درک اکولوژی گونهها امر مهمی است. توزیع، دردسترس بودن و کیفیت منابع غذایی بر موفقیت تولیدمثلی خرس قهوه ای اثرگذار است. همچنین، تخریب زیستگاه و محدودیت های زیستی متعاقب آن (ازجمله کاهش جمعیت طعمه و کاهش امنیت زیستگاه) باعث شده است که جمعیت خرس قهوه ای کاهش یابد. هدف از این پژوهش، بررسی رژیم غذایی بهاره خرس قهوه ای در پارک ملی گلستان بود. در جریان عملیات صحرائی و پیدا کردن مکان های مدفوع خرس قهوه ای، نمونه های جمع آوری شده به آزمایشگاه منتقل و کدگذاری شدند. سپس، مدفوع با خیساندن از هم باز شده و بقایای طعمه موجود در آن ها تفکیک و شناسایی شد. درصد حضور هر ماده غذایی در میان کل مدفوع مورد محاسبه قرار گرفت. نتایج نشان داد که در فصل بهار بیش ترین وزن خشک ماده غذایی در مدفوع خرس قهوه ای متعلق به گیاهان علفی بود. هم چنین، خرس ها در اوایل این فصل از حشرات و در طول فصل بهار نیز از مهره داران مختلف تغذیه کردند. با توجه به نتایج، گیاهان علفی در این فصل بیش ترین فراوانی را در بین مواد غذایی مصرفی خرس داشتند (60%). در بین مهره داران مصرفی خرس نیز مو مرال، مو کل و بز و مو خرگوش دارای درصد وقوع مشابهی بودند (5/17%). نکته قابل توجه در این فصل وجود مو الاغ در موادغذایی مصرفی خرس قهوه ای بود که از طریق لاشه خواری یا شکار به دست آمده است. نتایج این تحقیق نشان داد که خرس قهوه ای در پارک ملی گلستان منابع غذایی متفاوتی دارد به طوری که می تواند درصورتی که فعالیت های بشری زیستگاه این جانور را تخریب نکند، جمعیت خود را ارتقاء بخشد.
http://www.aejournal.ir/article_101349_0e55e5e4511a123e9eb2be46a5bc9cb2.pdf
2019-12-22
9
14
خرس قهوه ای
پارک ملی گلستان
عادات غذایی
رقیه
کوهسار
r.kohsar1993@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
حسین
وارستهمرادی
hvarasteh2009@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
حمیدرضا
رضایی
hamid.r.rezaei@gmail.com
3
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
آخانی، ح.، 1383. فلور مصور پارک ملی گلستان. انتشارات دانشگاه تهران. 590 صفحه.
1
حسن زاده کیابی، ب.؛ زهزاد، ب.؛ مجنونیان، ه.؛ فرهنگ دره شوری، ب. و گشتاسب، ح.، 1371. پارک ملی گلستان (ذخیره گاه زیست کره). انتشارات سازمان حفاظت محیطزیست. 129 صفحه.
2
حسن زاده کیابی، ب. و زهزاد، ب.، 1372 . پارک ملی گلستان. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. 230 صفحه.
3
زارعی، ع.ا.؛ محمودی، م.؛ حسین زاده، م.ح.؛ بندعلی، م. و محمودی،ف.،1396. بررسی فاکتورهای مؤثر بر آشیان بوم شناختی فضایی و زمانی خرس قهوه ای (Ursus arctos syriacus) در حاشیه جنوبی دامنه توزیع آن در استان فارس. فصلنامه محیط زیست جانوری. شماره 1، صفحات 39 تا 48.
4
شعربافی، ا.، 1391. بررسی رژیم غذایی پلنگ ایرانی. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد واحد علوم و تحقیقات تهران. 86 صفحه.
5
ضیائی، ه.، 1387 . راهنمایی صحرایی پستانداران ایران. انتشارات کانون آشنایی با حیاتوحش. 397 صفحه.
6
کولیوند، ح.؛ زمانی، ن.؛ زیدی، ا. و گنجی، ر.، 1392. بررسی رژیم غذایی خرس قهوه ای در منطقه حفاظت شده کبیرکوه. اولین همایش سراسری محیط زیست، انرژی و پدافند زیستی، تهران، موسسه آموزش عالی مهر اروند، گروه ترویجی دوستداران محیط زیست.
7
نظامیبلوچی، ب.، 1393. بررسی عاداتهای غذایی فصلی خرس قهوهای سوری (Ursus arctos syriacus Linnaeus,1758 ) در منطقه حفاظت شده البرز مرکزی. مجله تاکسونومی و بیوسیستماتیک. شماره 19، صفحات 27 تا 36.
8
Aichun, X.; Zhigang, J.; Chunwang, L.; Jixun, G.; Guosheng, W. and Ping, C., 2006. Summer food habits of brown bears in Kekexili Nature Reserve, Qinghai-Tibetan plateau, China. International Association for Bear Research and Management. Vol. 17, No. 2, pp: 132-137.
9
Bradley, B.J.; Stiller, M.; Doran-Sheehy, D.M.; Harris, T.; Chapman, C.A. and Vigilant, L., 2007. Plant DNA sequences from feces: Potential means for assessing diets of wild primates. American Journal of Primatology. Vol. 69, No. 6, pp: 699-705.
10
Bunnell, F.L. and Hamilton, A.N., 1983. Forage digestibility and fitness in grizzly bears. The International Conference on Bear Research and Management, Madison, Wisconsin, USA. Vol. 5 pp: 179-185.
11
Cicnjak, L.; Huber, D.; Roth, H.U.; Ruff, R.L. and Vinovrski, Z., 2014. Food Habits of Brown Bears in Plitvice Lakes National Park, Yugoslavia. Their Biology and Management. Vol. 7, pp: 221-226.
12
Calvignac, S.; Hughes, S. and Hanni, C., 2009. Genetic diversity of endangered brown bear (Ursus arctos) populations at the crossroads of Europe, Asia and Africa. Diversity and Distributions. Vol. 15, pp: 742-750.
13
Ciucci, P.; Tosoni, E.; Domenico, G.; Quattrociocchi, F. and Boitani, L., 2014. Seasonal and annual variation in the food habits of Apennine Brown Bears, central Italy. Journal of Mammalogy. Vol. 95, No. 3, pp: 572-586.
14
Clark, W.K., 1957. Seasonal food habits of the Kodiak bear. Trans. North Am. Wildlife Conference. Vol. 22, pp: 145-151.
15
Clevenger, A.P.; Purroy, F. and Peiton, M.R., 1992. Food habits of Brown Bear (Ursus arctos) in the Cantabrian Mountains, Spain. Department of Forestry, Wildlife and Fisheries. Vol. 73, No. 2, pp: 415-421.
16
Elgmork, K. and Kaasa, J., 1992. Food habits and foraging of the brown bear Ursus arctos in central south Norway. Ecography. Vol. 15, No. 1, pp: 101-110.
17
Frackowiak, W. and Gula, R., 1992. The autumn and spring diet of brown bear Ursus arctos in the Bieszczady Mountains of Poland. Acta theriol. Vol. 73, No. 4, pp: 339-344.
18
Grant MacHutchon, A. and Well Wood, D.W., 2003. Grizzly Bear food habits in the Northern Yukon, Canada. International Association for Bear Research and Management. Vol. 14, No. 2, pp: 225-235.
19
Gutleb, B. and Ziaie, H., 1999. On the distribution and status of the brown bear Ursus arctos and the asiatic black bear U. thibetanus in Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 18, No. 1, pp: 5-8.
20
Hamer, D. and Herrero, S., 1987. Grizzly bear food and habitat in the front ranges of Banff National Park, Alberta. International Conference on Bear Research Management. Vol. 7, pp: 199-213.
21
Hatler, D.F., 1972. Food habits of black bear in interior Alaska. Journal Article. Vol. 86, pp: 17-31.
22
Jakubiec Z. and Buchalczyk, T., 1987. The brown bear in Poland: its history and present numbers. Acta theriologica. Vol. 32, No. 1, pp: 289-306.
23
Juárez-Casillas, L.A. and Varas, C., 2013, Evaluation of black bear (Ursus americanus) diet and consequences in its conservation in Sierra de Picachos, Nuevo León, Mexico. Revista Mexicana de Biodiversidad. Vol. 84, No. 3, pp: 976-970.
24
MacHutchon, G. and Wellwood, D.W., 2003. Grizzly bear food habits in the northern Yukon, Canada. Ursus. Vol. 14, No. 2, pp: 225-235.
25
Mattson, D.J., 1998. Diet and morphology of extant and recently extinct northern bears. Journal Article. Vol. 10, pp: 479-496.
26
Mclellan, B.N. and Hovey, F.W., 1995. The diet of grizzly bears in the Flathead River drainage of southeastern British Columbia. Canadian Journal of Zoology. Vol. 73, pp: 704-712.
27
Naves, J.; Fennandez-Gil, A.; Rodriguez, C. and Delibes, M., 2006. Brown Bear food habits at the border of its range: a longterm study. Journal of Mammalogy. Vol. 87, No. 5, pp: 899-908.
28
Nelson, R.A.; Folk, G.E.; Pfeiffer, E.W.; Craighead, J.J.; Jonkel, Ch.J. and Steiger, D.L., 1983. Behavior, biochemistry, and hibernation in black, grizzly and polar bears. International Conference on Bear Research Management. Vol. 5, pp: 284-290.
29
Ohdachi, S. and Aio, T., 1987. Food Habits of Brown Bears in Hokkaido, Japan. International Association for Bear Research and Management. Vol. 7, pp: 215-220.
30
Paralikidis, N.P.; Papageorgiou, N.K.; Kontsiotis, V.J. and Tsiompanoudis, A.C., 2010. The dietary habits of the Brown bear (Ursus arctos) in western Greece. Aristotle University of Thessaloniki, Department of Forestry and Natural Environment, Laboratory of Wildlife and Freshwater Fisheries, 54124 Thessaloniki, Greece. Mammalian biology. Vol. 75, pp: 29-35.
31
Ramakrishnan, U.R.G.; Coss, N. and Pelkey, W., 1998. Tiger decline caused by the reduction of large ungulate prey: evidence from a study of leopard diets in southern India. Biological Conservation. Vol. 89, pp: 113-120.
32
Rode, K.D.; Robbins, C.T. and Shipiey, L.A., 2001. Constraints on herbivory by grizzly bears. Oecologia. Vol. 128, No. 1, pp: 62-71.
33
Servheen, C.; Herrero, S. and Peyton, B., 1999. The status and conservation of the bears of the world. International conference Bear Research, and Management, Monograph. Series. Vol. 3, 73 p.
34
Seryodkin, I.V.; Kostyria, L.V.; Goodrich, J.M.; Miquelle, D.G.; Smirnov, E.N.; Kerley, L.L.; Quigley, H.B. and Hornocker, M.G., 2003. Denning ecology of brown bears and Asiatic black bears in the Russian Far East. International Association for Bear Research and Management. Vol. 2, No. 14, pp: 153-161.
35
Stringham, S.F., 1990. Grizzly bear reproductive rate relative to body size. International Conference on Bear Research and Management, British Columbia, Canada. Vol. 8, pp: 433-443.
36
Swenson, J.E.; Adamicˇ, M.; Huber, D. and Stokke, S., 2007. Brown bear body mass and growth in northern and southern Europe. Oecologia. Vol. 153, No. 1, pp: 37-47.
37
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر عوامل محیطی بر پراکنش زیستگاههای مطلوب جمعیتهای جبیر (Gazella bennettii) در پارک ملی کویر
مدلسازی زیستگاه، به عنوان ابزار پشتیبان تصمیمگیری در مدیریت گونهها سبب میشود تا بتوان علاوه بر آگاهی از عوامل زیستمحیطی تأثیرگذار بر مطلوبیت زیستگاه یک گونه و ترتیب اهمیت آنها، زیستگاههای مطلوب برای گونه را در سطح مناطق تحت حفاظت مشخص نموده، نسبت به اتخاذ اقدامات مدیریتی مناسب اقدام نمود. در این مطالعه بررسی مطلوبیت زیستگاه و تعیین مهمترین عوامل مؤثر بر حضور جبیر در پارک ملی کویر با استفاده از الگوریتم حداکثر آنتروپی مورد بررسی قرار گفت. مدلسازی براساس ۷۸ نقطه حضور جبیر در پارک ملی کویر و چهار گروه متغیر محیطی شامل متغیرهای فیزیوگرافی، پوشش اراضی، انسانی و اقلیمی با کارایی پیشبینی عالی و مقدار AUC برابر با 0/992 انجام شد. براساس نتایج مساحت زیستگاههای با مطلوبیت بالا و متوسط برای جمعیتهای جبیر در پارک ملی کویر به ترتیب در حدود 456/65 و 679/05 کیلومترمربع برآورد شد. تأثیرگذارترین متغیر در توسعه مدل پراکنش جمعیتهای جبیر در پارک ملی کویر، مربوط به متغیر فاصله از منابع آبی (چشمهها و آبشخورها) شناسایی شد و براساس حساسیت سنجی انجام شده تیپ پوشش گیاهی، فاصله تا پاسگاههای محیط بانی، تنوع ناهمواریها، محدوده سالانه دما و پوشش اراضی ازجمله متغیرهای مهم دیگر در ساخت مدل پراکنش جبیر بودند.
http://www.aejournal.ir/article_101205_47a4723996ec7cb7cfb59641e80dc218.pdf
2019-12-22
15
22
مطلوبیت زیستگاه
حداکثر آنتروپی
پارک ملی کویر
جبیر (Gazella bennettii)
رمضان
جمشیدی
ram.jamshidi2000@gmail.com
1
گروه علوم و مهندسی محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
جلیل
ایمانی هرسینی
jalil.imani@ut.ac.ir
2
گروه علوم و مهندسی محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
مهدی
رمضانی
dr.mramezani@yahoo.com
3
گروه علوم و مهندسی محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
برهان
ریاضی
briazi@pmz.ir
4
گروه علوم و مهندسی محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
اکبری، ح.؛ بهروزی راد، ب. و حسن زاده کیابی، ب.، 1387. بررسی مطلوبیت زیستگاه آهوی ایرانی در منطقه حفاظت شده کالمند بهادران یزد. مجله محیط شناسی. سال 34، شماره 46، صفحات 111 تا 118.
1
اکبری، ح.؛ وارسته مرادی، ح. و رضایی، ح.، 1393. بررسی ترکیب و رجحان غذایی جبیر (Gazella bennettii shikarii) در فصل بهار در پناهگاه حیات وحش دره انجیر استان یزد. دو فصلنامه خشک بوم. جلد 4، شماره 2، صفحات 35 تا 42.
2
حاضری، ف.؛ همامی، م. و خواجه الدین، س.، 1388. استفاده از جوامع گیاهی توسط آهوی ایرانی (Gazella subgutturosa) در پناهگاه حیات وحش موته. علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی. سال 13، شماره 48، صفحات 427 تا 435.
3
ضیایی، ه.، 1388. راهنمای صحرایی پستانداران ایران. انتشارات کانون آشنایی با حیات وحش.
4
Akbari, H.; Habibipour, A. and Mousavi, S.J., 2013. Investigation on habitat preference andgroup size of Chinkara (Gazella bennettii) in Dareh-Anjeer Wildlife Refuge, Yazd province. Iranian Journal of Applied Ecology. Vol. 3, pp: 81-89.
5
Akbari, H.; Varasteh Moradi, H.; Sarhangzadeh, J. and Shams Esfandabad, B., 2014. Population status, distribution, andconservation of Chinkara (Gazella bennettii) in Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 60, pp: 189-194.
6
Duncan, A.J.; Ginane, C.; Elston, D.A.; Kunaver, A. and Gordon, I.J., 2006. How do herbivores trade-off the positive and negative consequences of diet selection decisions? Animal Behavior. Vol. 71, pp: 93-99.
7
Elith, J.H. and Graham, C., 2006. Novel method improves prediction of species distribution from occurrence data. Ecography. Vol. 29, pp: 129-156.
8
Farhadinia, M.S. and Hemami, M.R., 2010. Prey selection by the critically endangered Asiatic cheetah in central Iran. Journal of Natural History. Vol. 44, pp: 19-20.
9
Farhadinia, M.S.; Shams Esfandabad, B.; Karami, M.; Hosseini-Zavarei, F.; Absalan, H. and Nezami, B., 2009. Goitered Gazelle Gazella subgutturosa Guldenstaedt, 1780: its habitat preference and conservation needs in Miandasht Wildlife Refuge, northeastern Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 46, pp: 9-18.
10
Franklin, J., 2009. Mapping species distributions; spatial inference and prediction. Cambridge University Press.
11
Giovanelli, JGR.; De Siqueira, M.F.; Haddad, CFB. and Alexandrino, J., 2010. Modeling a spatially restricted distribution in the Neotropics: how the size of calibration area affects the performance of five presence-only methods. Ecological Modelling. Vol. 221, pp: 215-224.
12
Guisan, A. and Zimmermann, N.E., 2000. Predictive habitat distribution models in ecology. Ecological Modelling. Vol. 135, pp: 147-186.
13
Habibi, K., 2001a. Afghanistan. In: Mallon, D.P. and Kingswood, S.C., (eds), Antelopes. Part 4: North Africa, the Middle East, and Asia. IUCN, Gland, Switzerland. pp: 119-121.
14
Habibi, K., 2001b. Pakistan. In: Mallon, D.P. and Kingswood, S.C., (eds), Antelopes. Part 4: North Africa, theMiddle East, and Asia. IUCN, Gland, Switzerland. pp: 122-128.
15
Hemami, M.R., 1994. Investigation on taxonomy and distribution of Gazelles in Iran. TehranUniversity: M.Sc. Thesis.
16
Hemami, M.R. and Groves, C.P., 2001. Iran. In: Mallon, D.P. and Kingswood, S.C., (eds), Antelopes. Part 4: North Africa, the Middle East, and Asia. Global Survey and Regional Action Plans. pp: 114-118.
17
Henley, S.R. and Schmidt, I., 2007. Habitat selection by two desert-adapted ungulates. Journal of Arid Environment. Vol. 70, pp: 39-48.
18
Hijmans, R.J.; Cameron, S.E.; Parra, J.L.; Jones, P.G. and Jarvis, A., 2005. Very high resolution interpolated climate surfaces for global land areas. International Journal of Climatology. Vol. 25, pp: 1965-1978.
19
Hirzel, A.; Helfer, V. and Metral, F., 2001. Assessing habitat-suitability models with a virtual species. Ecological Modelling. Vol. 145, pp: 111-121.
20
IUCN SSC Antelope Specialist Group. 2017. Gazella bennettii. The IUCN Red List ofThreatened Species 2017. e.T8978A50187762.http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.RL TS.T 8978A50187762.en
21
Johnson, C.; Seip, D. and Boyce, M., 2004. A quantitative approach to conservation planning: using resource selection functions to map the distribution of mountain caribou at multiple spatial scales. Journal of Applied Ecology. Vol. 41, pp: 238-251.
22
Karami, M.; Hemami, M.R. and Groves, C.P., 2002. Taxonomic, distribution and ecological data on gazelles in Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 26, pp: 29-36.
23
Le Cuziat, J.; Lacroix, F.; Roche, P.; Vidal, E.; Medail, F.; Orhant, N. and Beranger, P.M., 2005. Landscape and human influences on the distribution of the endangered North African houbara bustard (Chlamydotis undulate undulata) in Eastern Morocco. Anim. Conserv. Vol. 8, pp: 143-152.
24
Pearson, R.G.; Raxworthy, C.J.; Nakamura, M. and Peterson, A.T., 2007. Predicting species' distributions from small numbers of occurrence records: A test case using cryptic geckos in Madagascar. Journal of Biogeography. Vol. 34, pp: 102-117.
25
Phillipes, S.J.; Dudík, M. and Schapire, R.E., 2004. A maximum entropy approach to species distribution modeling. In Proceedings of the 21st International Conference on Machine Learning; ACM Press: New York, NY, USA. pp. 655-662.
26
Phillips, S.J.; Dudik, M.; Elith, J.; Graham, C.H.; Lehmann, A.; Leathwick, J. and Ferrier, S., 2009. Sample selection bias and presence-only distribution models: implications for background and pseudo-absence data. Ecological Application. Vol. 19, pp: 181-197.
27
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological Modelling. Vol. 190, pp: 231-259.
28
Rahmani, A.R., 1990. Distribution, density, group size and conservation of the Indian gazelle or chinkara Gazella bennetti (Sykes 1831) in Rajasthan, India. Biological Conservation. Vol. 51, pp: 177-189.
29
Rahmani, A.R., 2001. India. In: Mallon, D.P. and Kingswood, S.C., (eds), Antelopes. Part 4: North Africa, the Middle East, and Asia. Global Survey and Rgeional Action Plans. IUCN, Gland, Switzerland. pp: 178-187.
30
Rotenberry, J.T.; Preston, K.L. and Knick, S.T., 2006. GIS-based niche modeling for mapping species’ habitat. Ecology. Vol. 87, pp: 1458-1464.
31
Stamps, J.A. and Swaisgood, R.R., 2007. Some place like home: experience, habitat selection and conservation biology. Appl. Anim. Behav. Sci. Vol. 102, pp: 392-409.
32
Swets, J., 1988. Measuring the accuracy of diagnostic systems. Science. Vol. 240, pp: 1285-1293.
33
Trisurat, Y.; Bhumpakphan, N.; Reed, D.H. and Kanchanasaka, B., 2012. Using species distribution modeling to setmanagement priorities for mammals in northern Thailand. Journal for Nature Conservation. Vol. 20, pp: 264-273.
34
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی مطلوبیت زیستگاه کل و بز (Capra aegagrus) در منطقه حفاظتشده خائیز در فصل زادآوری با استفاده از روش HEP
در این مطالعه، هدف بررسی مطلوبیت زیستگاه گونه کل و بز در فصل زادآوری در منطقه حفاظت شده سولک، در استان کهگیلویه و بویر احمد، شهرستان بهمئی، با استفاده از روش هپ بوده است. در حال حاضر بیش ترین تخریب های زیستگاهی متوجه پستانداران بزرگ جثه به خصوص علف خوارانی مانند کل و بز است لذا حفظ زیستگاه های زادآوری و مطالعه آن ها به خصوص زیستگاه های مطلوب گونه های کم پراکنش مثل کل و بز تاثیر به سزایی بر بقا و تولیدمثل گونه ها خواهد داشت. ارزیابی زیستگاه به عنوان یک راه حل عملی برای انجام این مهم مطرح است با ارزیابی زیستگاه می توان مطلوبیت و تعداد واحدهای زیستگاهی موجود برای زادآوری این گونه را به دست آورد. برای این کار ابتدا منطقه به دو زیستگاه شمالی و جنوبی تقسیم شد. سپس ارزیابی زیستگاه گونه کل و بز در فصل زادآوری به روش HEP و رتبه دهی به متغیرهای مختلف زیستگاهی در دو زیستگاه انجام شد. در انتها نتایج حاصل از این دو مورد مقایسه قرار گرفتند. شاخصهای زیستگاهی اندازه گیری شده عبارتند از: تراکم و تنوع پوشش گیاهی، ارتفاع، شیب، جهت، دسترسی به منابع آبی، فاصله از مناطق مسکونی، فاصله از جاده، میزان رفت و آمد شکارچیان، شدت حضور دام در منطقه و طعمه خواری . امتیاز هر شاخص از ۱ تا ۵ متغیر بود. سپس براساس مطلوبیت زیستگاه، مقادیر HSI برای هریک از بخشها محاسبه شد.
http://www.aejournal.ir/article_101414_dc276fa60336aafdd51c3d9edad5eae6.pdf
2019-12-22
23
32
زیستگاه
مطلوبیت زیستگاه
منطقه حفاظت شده سولک
کل و بز
خائیز
سید سجاد
دانشی
zahra.sokhango20@gmail.com
1
گروه محیط زیست، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
AUTHOR
فرنگیس
سخنگو
f.sokhango95@gmail.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
LEAD_AUTHOR
بهروز
بهروزی راد
as.1370@yahoo.com
3
گروه محیط زیست، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
AUTHOR
اوکاتی، س.، 1389. ارزیابی مطلوبیت زیستگاه جبیر در منطقه شکار ممنوع مک سرخ زابل در دو فصل پاییز و زمستان. پایان نامه کارشناسی ارشد محیط زیست، دانشگاه آزاد اسلامی واحدعلوم و تحقیقات خوزستان.
1
شیرزاد، م.؛ ریاضی، ب. و توکلی، م.، ۱۳۹۱ .تهیه نقشه مطلوبیت زیستگاه های گونه پازن در پارک ملی خجیر. محیط زیست جانوری. سال 4، شماره 4، صفحات ۹ تا 1۶.
2
فراشی، آ.؛ کابلی، م. و مومنی، ا.، ۱۳۸۱. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه بز و پازن (Capra aegagrus) به کمک روش تحلیل فاکتوری آشیان بوم شناختی (ENFA) در پارک ملی کاله قاضی، استان اصفهان. محیط زیست طبیعی دانشگاه تهران (منابع طبیعی ایران). دوره ۶، شماره 1، صفحات ۳۳ تا ۳۶.
3
کرمی، م.؛ ریاضی، ب. و کلانی، ن.، 1385. ارزیابی زیستگاه کفتار ایرانی (Hyaena hyaena hyaena) در پارک ملی خجیر و ارائه مدل مطلوبیت به روشHEP . مجله علوم محیطی. شماره 11، صفحات 77 تا 86.
4
گلجانی، ر.، 1388. مطلوبیت زیستگاه کل و بز را در پارک ملی کلاه قاضی با روش تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران.
5
گلزار، ا.، ۱۳۹۰. مکان یابی و تعیین مطلوبیت زیستگاه گوزن زرد ایرانی (Dama mesopotamica) با استفاده از روش (HEP=HatbitatEvaluation Produces) در منطقه حفاظت شده دنا. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات خوزستان.
6
مصطفوی، س.م.؛ علیزاده، ا.؛ کابلی، م.؛ کرمی، م.؛ گلجانی، ر. و محمدی، س.، ۱۳۸۹. تهیه نقشه مطلوبیت زیستگاههای بهاره و تابستانه گونه پازن در پارک ملی لار. فصلنامه علوم و فنون طبیعی. شماره ۲، صفحات 111 تا 121.
7
منوچهری، و.، 1390. مکانیابی و تعیین مطلوبیت زیستگاه گوزن زرد ایرانی (Dama mesopotamica) با استفاده از روش HEP =)(Hatbitat Evaluation Produces در منطقه حفاظت شده قلاجه استان کرمانشاه به منظور رهاسازی آن. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات خوزستان.
8
Allen, A.W., 2002. Habitat suitability Index Model. Gray Rartridge. U.S fish and wildlife servise.
9
Alqamy, H.E.; Abdelhameed, A.I.; Nagy, A.; Hamada, A.; Rashad, S. and Kamel, M., 2010. Predicting the status and distribution of the nubian ibex (capra nubiana) in the highaltitude mountains of south sinai (Egypt). Galemys. Vol.22, pp: 517-530.
10
Gavashelishvili, A., 2004. Habitat selection by East Caucasian tur. BiologicalConservation. Vol.120, pp: 391-398.
11
Hirzel, E., 2006. Evaluating the ability of habitat species presences. Ecological Modelling. Vol. 199, pp: 142- 152.
12
Nanni, R.F. and Lawes, M.J., 1993. The density, habitat use and social organisation of Dorcas Gazelles (Gazella dorcas) in Makhtesh Ramon, Negev Desert, Israel. J. Arid Environ. Vol. 24, No. 2, pp: 177-196.
13
Olever, F. and Wotherspoon, J., 2005. Modeling habitat selection Using presence- only data: Case stady of a colonial hollow nesting bird, the snow petrel, Ecological Modeling. Vol. 95, pp: 1-18.
14
Sarhangzadeh, J.; Yavari, A.R.; Hemami, M.R.; Jafari, H.R. and Shamsesfandabad, B., 2013. Habitat suitability modeling for wild goat (Capra aegagrus) in amountainous arid area. Central Iran. Caspian Journal of Environmental Sciences. Vol. 11, pp: 41-51.
15
Shams Esfandabad, B.; Karami, M.; Riazi, B. and Sadough, M.B., 2010. Habitat associations of wild goat in central Iran: implications for conservation. European Journal of Wildlife Research. Vol. 56, pp: 883-894.
16
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تنوع ژنتیکی و اثر انتخاب ژن های RNA ریبوزومی و ناقل در ژنوم میتوکندری شترهای تک کوهانه و دو کوهانه
حفاظت از ذخایر ژنتیکی با آگاهی از ساختار ژنتیکی و بررسی ژنوم میتوکندری بین و درون گونه ای یک شاخص مناسب از میزان تنوع ژنتیکی جهت مطالعه ژنتیک جمعیت است. از آن جائی که که ژن های غیرکدکننده 16sRNA،12sRNA و tRNA ها عناصر تنطیمی درگیر در همانندسازی و رونویسی میتوکندری می باشند. در این پژوهش توالی های 2 rRNAو 22 tRNA موجود در ژنوم میتوکندریایی شترهای تک کوهانه و دوکوهانه مقایسه و مورد تجزیه و تحلیل بیوانفورماتیکی قرارگرفت. نتایج نشان دادکه در مقایسه توالی ژنهای RNA غیرکدکننده شترهای تک کوهانه و دوکوهانه 46 نوکلئوتید در توالی 16sRNA، 45 نوکلئوتید در 12sRNA و 44 نوکلئوتید در tRNA ها متغیر می باشد که تنها 2 ژن rRNA و 4 ژن از tRNA ها نسبت به تست های تکامل خنثی معنی دار بودند. بررسی پیامدهای ساختاری این نوکلئوتیدهای متغیر با استفاده از مدل سازی تأیید کرد که تنها نوکلئوتیدهای متغیر در حلقه D از ژن tRNA-Trp سبب تغییر شکل فضایی ساختار برگ شبدری tRNA تریپتوفان و انرژی آزاد گیبس می شود. براساس تجزیه و تحلیل های این پژوهش ژن های RNA غیرکدکننده ژنوم میتوکندری گونه های شتر حفاظت شده اند.
http://www.aejournal.ir/article_101454_26864264811f509368722fcb517d6296.pdf
2019-12-22
33
38
ژنوم میتوکندری
اثر انتخاب
حفاظت ژنتیکی
نواحی غیرکدکننده
زهرا
رودباری
rodbari.zahra@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه جیرفت، جیرفت، ایران
AUTHOR
خدیجه
نصیری
khadijeh_nasiri@yahoo.com
2
گروه فیزیولوژی ورزشی، دانشکده علوم ورزشی، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران
LEAD_AUTHOR
ازغندی، م. و طهمورث پور، م.، 1393. تجزیه و تحلیل ژنتیکی و فیلوژنتیکی ناحیه دی لوپ در شترهای تک کوهان و دوکوهان ایران. پژوهش در نشخوارکنندگان. دوره 3، شماره 2، صفحات 93 تا 108.
1
شهابی، ا. و طهمورث پور،م.، 1393. تجزیه و تحلیل بیوانفورماتیکی و فیلوژنتیکی ژن های NADH3 وNADH4L ژنوم میتوکندری شتر دو کوهانه ایران. بیوتکنولوژی کشاورزی. دوره 7، شماره 3، صفحات 163 تا 173.
2
عباسی دلویی, ط.؛ سخاوتی، م.ه. و طهمورث پور، م.، 1395. تجزیه و تحلیل بیوانفورماتیکی و فیلوژنتیکی ژنCOX3 میتوکندری شترهای تک کوهانه و دوکوهانه ایران. پژوهش های علوم دامی ایران. شماره 2، صفحات 361 تا 369.
3
Avise, J.C., 2000. Phylogeography: the history and formation of species. Harvard University Press. Massachusetts, United States.
4
Ballard, J.W.O. and Whitlock, M.C., 2004. The incomplete natural history ofmitochondria. Molecular Ecology. Vol. 13, pp: 729-744.
5
Bao, H.; Zhao. C.; Zhang, L.; Li, J. and Wu, C., 2008. Single-nucleotide polymorphisms of mitochondrially coded subunit genes of cytochrome c oxidase in five chicken breeds. Mitochondrial DNA. Vol. 19, pp: 461-464.
6
Chen, X.; Prosser, R.; Simonetti, S.; Sadlock, J.; Jagiello, G. and Schon, E.A., 1995. Rearranged mitochondrial genomes are present in human oocytes.American Journal of Human Genetics. Vol. 57, pp: 239-247.
7
Cooper, G.M. and Hausamn, R.E., 2007. The Cell: A Molecular Approach. 4nd ed. OXFORD UNIV PR, Sinauer Associates, Inc.
8
Cui, P.; Ji, R.; Ding, F.; Qi, D.; Gao, H.; Meng, H.; Yu, J.; Hu, S. and Zhang, H., 2007. A complete mitochondrial genome sequence of the wild two-humped camel (Camelus bactrianus ferus): an evolutionary history of camelidae. BMC Genomics. Vol. 8, 241 p.
9
Drummond, A.J.; Rambaut, A.; Shapiro, B. and Pybus, O.G., 2005.Bayesiancoalescent inference of past population dynamics from molecular sequences.Molecular Biology and Evolution. Vol. 22, pp: 1185-1192.
10
Freeland, J.R.; Petersen, S.D. and Kirk, H., 2011. Molecular Ecology. 2th Edition. Wiley Blackwell. New Jersey, United States.
11
Gray, M. 2012. Mitochondrial Evolution. Cold Spring Harbor perspectives in biology. Vol.4, pp:a011403.
12
Han, J.; Ochieng, J.W.; Lkhagva, B. and Hanotte, O., 2004. Genetic diversity and relationship of domestic Bactrian camels (Camelus bactrianus) in China & Mongolia. Journal of Camel Practice and Research. Vol. 11, pp: 97-99.
13
Helm, M.; Brulé, H.; Friede, D.; Giegé, R.; Puetz, D.O.E.R.N. and Florentz, C., 2000. Search for characteristic structural features of mammalian mitochondrial tRNAs. RNA. Vol. 6, pp.1356-1379.
14
Hilborn, R.; Quinn, T. P.; Schindler, D.E. and Rogers, D.E., 2003. Biocomplexity and fisheries sustainability. Proceedings of the National Academy of Sciences. Vol. 100, pp: 6564-6568.
15
Hughes, J.B.; Daily, G.C. and Ehrlich, P.R., 1997. Population diversity: its extent and extinction. Science. Vol. 278, pp: 689-692.
16
Hussain, T.; Babar, M.E.; Musthafa, M.M.; Saif, R.; Hussain, F.; Aqeel, M. and Yaqub, A., 2015. Mitochondrial ATP6 and ATP8 genes based molecular diversity and phylogenetic analysis in Punjab urial. Journal of Animal and Plant Sciences. Vol. 25, pp:311-317.
17
Ji, R.; Cui, P.; Ding, F.; Geng, J.; Gao, H.; Zhang, H.; Yu, J.; Hu, S. and Meng, H., 2009. Monophyletic origin of domestic bactrian camel (Camelus bactrianus) and its evolutionary relationship with the extant wild camel. Animal Genetic. Vol. 40, pp: 377-382.
18
Kujoth, G.C.; Bradshaw, P.C.; Haroon, S. and Prolla, T.A., 2007. The Role of Mitochondrial DNA Mutations in Mammalian Aging. PLoS Genetic. Vol. 3, pp: e24.
19
Librado, P. and Rozas, J., 2009. DnaSP v5: A software for comprehensive analysis of DNA polymorphism data. Bioinformatics. Vol. 25, pp: 1451-1452.
20
Lole, K.S.; Bollinger, R.C.; Paranjape, R.S.; Gadkari, D.; Kulkarni, S.S.; Novak, N.G.; Ingersoll, R.; Sheppard, H.W. and Ray, S.C., 1999. Full-Length Human Immuno deficiency Virus Type 1 Genomes from Subtype C-Infected Seroconverters in India, with Evidence of Intersubtype Recombination. Virology Journal. Vol. 73, pp: 152-160.
21
Manfredi, G.; Thyagarajan, D.; Papadopoulou, L.C.; Pallotti, F. and Schon E.A., 1997. The fate of human sperm derived mtDNA in somatic cells. TheAmerican Journal of Human Genetics. Vol. 61, pp: 953-960.
22
Patwardhan, A.; Samit, R. and Amit, R., 2014. Molecular markers in phylogenetic studies, a review. Journal of Phylogenetics and Evolutionary Biology.
23
Ramos-Onsins S.E. and Rozas, J., 2002. Statistical properties of new neutralitytests against population growth. Molecular Biology and Evolution. Vol. 19, pp:2092-2100.
24
Tamura, K.; Stecher, G.; Peterson, D.; Filipski, A. and Kumar, S., 2013. MEGA6: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 6.0. Molecular Biology and Evolution. Vol. 30, pp: 2725-2729.
25
Zuker, M., 2003. Mfold web server for nucleic acid folding and hybridization prediction. Nucleic acids research. Vol. 31, pp: 3406-3415.
26
ORIGINAL_ARTICLE
مولفه های تولیدی و تولیدمثلی موثر بر حذف در گاوهای شیری هلشتاین
حذف گاوهای شیری از گله و جایگزینی آنها با گاوهای جدید فرایندی پرهزینه است، بنابراین برای کاهش هزینه ها و افزایش میزان سودآوری گله، شناسایی عوامل موثر بر حذف گاوهای شیری ضروری به نظر می رسد. این پژوهش برای بررسی ارتباط بین مولفه های تولیدی و تولیدمثلی با حذف گاوهای شیری انجام شد. داده ها شامل رکوردهای زایش بین سال های 1382 تا 1391 بود. مدل رگرسیون لجستیک برای واکاوی داده ها به کار برده شد. متغیر پاسخ، حذف گاوها، و متغیر پیشبین شامل تعداد شکم زایش، تولید شیر 305 روزه، سخت زایی، سن در اولین زایش، فاصله زایش تا اولین و آخرین تلقیح و فاصله گوساله زایی بودند. نتایج نشان داد که شانس حذف با افزایش تعداد زایش دام ها به طور معنی داری افزایش یافت. هم چنین به جز گاوهایی که در درجه سخت زایی 2 بودند با افزایش درجه سخت زایی ریسک حذف به طور معنی داری افزایش یافت. نسبت شانس حذف برای گاوهایی که تولید شیر بیش تر داشتند و گاوهایی که سن اولین زایش آن ها حدود 24 ماه بود به طور معنی داری کم تر بود. نتایج هم چنین نشان داد که با افزایش فاصله گوساله زایی، روزهای زایش تا آخرین تلقیح و تعداد تلقیح به ازای آبستنی ریسک حذف به طور معنی داری افزایش یافت ولی فاصله زایش تا اولین تلقیح اثری بر حذف گاوهای شیری نداشت. نتایج نشان داد مولفه های تولیدی و تولیدمثلی بر حذف گاوهای شیری تاثیر معنی داری دارد و با مدیریت بهتر می توان ریسک حذف را کاهش سودآوری مزرعه را افزایش داد.
http://www.aejournal.ir/article_101458_fc076d0e368f5529cc11ba98c16510f3.pdf
2019-12-22
39
46
ریسک فاکتور
گاوهای هلشتاین
تولید
تولیدمثل
حذف
جمیل
بهرام پور
jamilb60@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه جیرفت. جیرفت. ایران
LEAD_AUTHOR
مرتضی
ستایی مختاری
mrzmokhtari59@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه جیرفت. جیرفت. ایران
AUTHOR
صیف زاده، ص.؛ رمضانی، م.؛ سیدشریفی، ر.؛ سیف دواتی، ج.؛ نورمحمدی، س. و جبرئیلی، ر.، 1395. علل حذف در گله های گاو شیری کشت، صنعت و دامپروری مغان. فصلنامه تحقیقات کاربردی در علوم دامی. شماره 21، صفحات 41 تا 50.
1
ﻫﺪاﯾﺖاﯾﻮرﯾق، ن. و پوراسدآستمال، ک.، 1396. ﺑﺮرﺳﯽ ﻋﻮاﻣﻞ ﻣﻮﺛﺮ ﺑﺮ ﺣﺬف در ﮔﺎوﻫﺎی ﺷﯿﺮی ﻫﻠﺸﺘﺎﯾﻦ ﺷﻤﺎلﻏﺮب اﯾﺮان. مجله ﭘﮋوهش های ﺗﻮﻟﯿﺪات دامی. سال 8، شماره 16، صفحات 183 تا 191.
2
Alvasen, K.; Jansson Mörk, M.; Hallén Sandgren, C.; Thomsen, P. T. and Emanuelson, U., 2012. Herd-level risk factors associated with cow mortality in Swedish dairy herds. Journal of Dairy Science. Vol. 95, pp: 4325-4362.
3
Barrier, A.C. and Haskell, M.J., 2011. Calving difficulty in dairy cows has a longer effect on saleable milk yield than on estimated milk production. Journal of Dairy Science. Vol. 45, pp: 451-463.
4
Bicalho, R.C.; Galvao, K.N.; Cheong, S.H.; Gilbert, R.O.; Warnick, L.D. and Guard, C.L., 2007. Effect of stillbirth on dam’s survival and reproduction performance in Holstein dairy cows. J of Dairy Science. Vol. 90, pp: 2797-2803.
5
Booth, C.J.; Warnick, L.D.; Gro ¨hn, Y.T.; Maizon, D.O.; Guard, C.L. and Janssen, D., 2004. Effect of Lameness on Culling in Dairy Cows. Journal of Dairy Science. Vol. 87, pp: 4115-4122.
6
de Vries, A. and Risco, C.A., 2005. Trends and Seasonality of Reproductive Performance in Florida and Georgia Dairy Herds from 1976 to 2002. Journal of Dairy Science. Vol. 88, No. 9, pp: 3155-3165.
7
Dematawewa, C.M. and Berger, P.J., 1998. Genetic and phenotypic parameters for 305-day yield, fertility, and survival in Holsteins. Journal of Dairy Science. Vol. 81, pp: 2700-2709.
8
Eaglen, S.A.E.; Coffey, M.P.; Woolliams, J.A.; Mrode, R. and Wall, E., 2011. Phenotypic effects of calving ease on the subsequent fertility and milk production of dam and calf in UK Holstein-Friesian heifers. Journal of Dairy Science. Vol. 94, pp: 5413-5423.
9
Fetrow, J.; Nordlund, K.V. and Norman, H.D., 2006. Culling: Nomenclature, definitions, and recommendations. Journal of Dairy Science. Vol. 89, pp: 1896-1905.
10
Heinrichs, A.J., 1993. Raising dairy replacements to meet the needs of the 21st century. Journal of Dairy Science. Vol. 76, pp: 3179-3187.
11
Kalantari, A.; Mehrabani-Yeganeh, H.; Moradi, M.; Sanders, A. and De Vries, A., 2010. Determining the optimum replacement policy for Holstein dairy herds in Iran. Journal of Dairy Science. Vol. 93, No. 5, pp: 2262-2270.
12
Löf, E.; Gustafsson, H. and Emanuelson, U., 2007. Associations between Herd Characteristics and Reproductive Efficiency in Dairy Herds. Journal of Dairy Science. Vol. 90, pp: 4897-4907.
13
M’hamdi, N.; Aloulou, R.; Brar, S.K.; Bouallegue, M. and Ben Hamouda, M., 2010. Study on functional longevity of Tunisian Holstein dairy cattle using a Weibull proportional hazards model. Livestock Science. Vol. 132, pp: 173-176.
14
McConnel, C.S.; Lombard, J.E.; Wagner, B.A. and Garry, F.B., 2008. Evaluation of factors associated with increased dairy cow mortality on United States dairy operations. Journal of Dairy Science. Vol. 91, pp: 1423-1432.
15
Miller, R.H.; Kuhn, M.T.; Norman, H.D. and Wright, J.R., 2008. Death losses for lactating dairy cows in herds enrolled in dairy herd improvement test plans. Journal of Dairy Science. Vol. 91, pp: 3710-3715.
16
Nilforooshan, M.A. and Edriss, M.A., 2004. Effect of Age at First Calving on Some Productive and Longevity Traits in Iranian Holsteins of the Isfahan Province. Journal of Dairy Science. Vol. 87, No. 7, pp: 2130-2135.
17
Nyamushambaa, G.B.; Tavirimirwab, B. and Bananac, N.Y.D., 2013. Non-genetic factors affecting milk yield and composition of Holstein-Friesian cows nested within natural ecological regions of Zimbabwe. Scientific Journal of Animal Science. Vol. 2, No. 5, pp: 102-108.
18
Ojango, J.M.K.; Ducrocq, V. and Pollott, G.E., 2005. Survival analysis of factors affecting culling early in the productive life of Holstein-Friesian cattle in Kenya. Livestock Production Science. Vol. 92, pp: 317-322.
19
Pinedo, P.J.; de Vries, A. and Webb, D.W., 2010. Dynamics of culling risk with disposal codes reported by Dairy Herd Improvement dairy herds. Journal of Dairy Science. Vol. 93, pp: 2250-2261.
20
Pryce, J.E.; Coffey, M.P. and Brotherstone, S., 2000. The Genetic Relationship between Calving Interval, Body Condition Score and Linear Type and Management Traits in Registered Holsteins. Journal of Dairy Science. Vol. 83, pp: 2664-2671.
21
Raboisson, D.; Cahuzac, E.; Sans, P. and Allaire, G., 2011. Herdlevel and contextual factors influencing dairy cow mortality in France in 2005 and 2006. Journal of Dairy Science. Vol. 94, pp: 1790-1803.
22
Sewalem, A.; Miglior, F.; Kistemaker, G.J.; Sullivan, P. and Van Doormaal, B.J., 2008. Relationship between reproduction traits and functional longevity in Canadian dairy cattle. Journal of Dairy Science. Vol. 91, pp: 1660-1668.
23
Shahid, M.Q.; Reneau, J.K.; Chester-Jones, H.; Chebel, R.C. and Endres, M.I., 2015. Cow- and herd-level risk factors for on-farm mortality in Midwest US dairy herds. Journal of Dairy Science. Vol. 98, pp: 4401-4413.
24
Smith, J.W.; Ely, L.O. and Chapa, A.M., 2000. Effect of region, herd size, and milk production on reasons cows leave the herd. Journal of Dairy Science. Vol. 83, pp: 2980-2987.
25
Thomsen, P.T.; Kjeldsen, A.M.; Sorensen, J.T. and Houe, H., 2004. Mortality (including euthanasia) among Danish dairy cows (1990-2001). Preventive Veterinary Medicine. Vol. 62, pp: 19-33.
26
Zavadilová, L. and Stipkova, M., 2013. Effect of age at first calving on longevity and fertility traits for Holstein cattle. Czech. Journal of Animal Science. Vol. 58, pp: 47-57.
27
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی سرواپیدمیولوژیک لپتوسپیروز در گاوهای استان گلستان
لپتوسپیروز یکی از شایع ترین بیماری های مشترک بین انسان و دام در سراسر دنیا محسوب می شود. با توجه به گزارش فوت یک کشاورز در گرگان به علت لپتوسپیروزو تلفات غیرعادی جمعیت موش های جنگلی در علی آباد کتول، بررسی لپتوسپیروز در استان ضروری به نظر می رسید. بنابراین، در مطالعه حاضر شیوع سرمی نمونه های Leptospira Interrogans در بین گاوهای استان گلستان بررسی شد. نمونه خون از 505 راس گاو در سنین مختلف در سطح استان گلستان اخذ گردید و به روش میکروآگلوتیناسیون مورد بررسی سرولوژی قرار گرفت. میزان آلودگی گاوها به باکتری لپتوسپیرا در سنین، جنسو فصول مختلف باروش کای مربع و با استفاده از نرم افزار SPSS بررسی شد. کل نمونه ها، 137 نمونه (27/12) دارای پاسخ سرولوژی مثبت بود که 108 (78/84 درصد)، 25 (18/25 درصد) و 4 نمونه (2/91 درصد) به ترتیب فقط با یک، دو و سه سرووار واکنش مثبت نشان دادند. در نمونه های دارای پاسخ سرولوژی مثبت، 32/75 درصد با سرووار ایکتروهموراژِیه، 31/26 درصد با سرووار سرجروهاردجو، 22/22 درصد با سرووار اتومنالیس، 9/15 درصد با سرووار گریپوتیفوزا، 5/27 درصد با سرووار پومونا و 3/50 درصد با سرووار کانیکولا واکنش مثبت نشان دادند. بیش ترین فراوانی (30/99 درصد) در تیتراسیون 1:800 مشاهده گردید. بیش ترین فراوانی در سن 3-2 سالگی (52/63 درصد)، جنس ماده (27/48 درصد) و در فصل تابستان (37/93 درصد) مشاهدهگردید. اما از نظر آماری اختلاف معنی داری مشاهده نشد (0/05<P). عفونت لپتوسپیرایی در سطح استان به طور فعال وجود دارد. هم چنین مقایسه سروتیپ غالب حاکی از تغییر نوع عامل بیماری زا از گریپتوفوزا در سال 2007 به ایکتروهمراژیه در زمان تحقیق حاضر بود.
http://www.aejournal.ir/article_101499_74395f2e3b3792180ae00f030813bd41.pdf
2019-12-22
47
52
لپتوسپیروز
آگلوتیناسیون
گاو
گلستان
ایکتروهموراژیه
پرستو
پورغفور لنگرودی
poorghafoor@yahoo.com
1
موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
اسدپور، ی.، 1384. مطالعه سرمی لپتوسپیروز در گاوهای استان گیلان. گزارش نهایی پروژه تحقیقاتی موسسه تحقیقات رازی.
1
پورغفورلنگرودی، پ.، 1397. بررسی زاپیدمی لپتوسپیروز در گاوهای استان گلستان طی سال های 85-86. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 10، شماره 4، صفحات 53 تا 58.
2
حسن پور، ا. و فرتاش وند، م.، 1386. تعیین میزان شیوع سرولوژیک آلودگی به لپتوسپیرا در گاوداری های شیری اطراف تبریز. پژوهش سازندگی. شماره 74، صفحات 67 تا 77.
3
خاکی، پ. و روحی، ز.، 1393. کاربرد روش میکروآگلوتیناسیون در تعیین سرووارهای لپتوسپیرا. مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی گرگان. دوره 16، شماره 3، صفحات 99 تا 105.
4
زهتاب، ح.، 1383. گزارش اداره کل دامپزشکی گلستان.
5
طباطبایی، م. و فیروزی، ر.، 1380. بیماری هایی باکتریایی دام. انتشارات دانشگاه تهران. صفحات 431 تا 435.
6
عبداالله پور، غ.، 1366. بررسی سرواپیدمیولوژی لپتوسپیروز در دام های کوچک. پایان نامه دکترا. دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران.
7
گلشا، ر. و خدابخشی، ب.و.، 1386. گزارش 12 مورد از بیماری لپتوسپیروز در استان گلستان در سال 1383. مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی گرگان. دوره 9، شماره 2، صفحات 76 تا 80.
8
مقامی، ق.، 1359. بررسی لپتوسپیروز دربچه انداری ماده گاوهای اطراف تهران. انتشارات سازمان دامپزشکی. شماره 20، صفحات 50 تا .60
9
واحدی نوری، ن.، 1379. شناسایی سویه های غالب لپتوسپیرا در گاوهای مشکوک در استان مازندران.گزارش نهایی پروژه تحقیقاتی موسسه تحقیقات رازی.
10
Abdolahpour, G. and Shfighi, T., 2009. Serodiagnosis of leptospirosis in cattle in north of Iran, Gilan. J Vet Res. Vol. 3, No. 1, pp: 7-10.
11
Adler, B. and Pena Mocrezuma, A., 2010. Leptospira and leptospirosis. Vet microbial. Vol. 140, pp: 287-296.
12
Agésilas, F.; Gey, F.; Monbrunt, A.; Combes, JC.; Llanas, B. and Schlossmacher, P., 2005. Acute leptospirosis in children in Reunion Island: a retrospective review of 16 cases. Arch Pediatr. Vol. 12, No. 9, pp: 1344-1348.
13
Alanso-Andicoberry, C.; Garcia-Pena, F.J.; Pereira Bueno, J.; Costas, E. and Ortego Mora, L.M., 2001. Herd level risk factors associated with leptospira spp. Seroprevalence in dairy and beef catle in Spain. Preventive veterinary medicine. Vol. 52, pp: 109-117.
14
Amjad Islam, A. and Ijaz, M., 2019. Leptospirosis: Rising Nuisance for cattle and threat to public health. Bacterial Cattle Disease.
15
Bahari, A. and Abdollahpour, G., 2011. A serological survey on leptospirosis in aborted dairy cattle in industrial farms of hamedan suburb, Iran. Iranian Jornal of Veterinary Research, Shiraz university. Vol. 12, No. 4, 37 p.
16
Barkin, R.M.; Gackian, I.C. and Glosser, I.W., 1974. Infection by Leptospira ballum: a laboratory associated case. South. Med. J. Vol. 67, pp: 155-156.
17
Brenner, J.; Kaufmann, A.F.; Sulzerk, R.; Steigerwalt, A.G.; Rogers, F.C. and Weyant, R.S., 1999. Further determination of DNA relatedness between serogroups and serovars in the family Leptospiraceae with a proposal for Leptospira alexanderi sp. nov. and four new Leptospira genomospecies. Int. J. Syst. Bacteriol. Vol. 49, pp: 839-858.
18
Department of Agriculture, Fisheries and Forestry Australia. 2000. A scientific review of leptospirosis and implication for quarantine policy. Biosecurity Australia. pp: 1-93.
19
Grosi, T.; Vand Yoosefi, M.; Famil Ghadakchi, J. and Noroozian, H.V., 2003. Epidemiologic survey of leptospirosis in staff and dairy herds of livestock around Mashhad. Journal of Faculty of Veterinary Medicine of Tehran. Vol. 58, No. 1, pp: 89-94. (In Persian)
20
Guitian, F.J.; Garcia- pena, F.J.; Olivera, J. and Yus, E., 2001. Serological study of the frequency of leptospira infection among dairy cows in farms with suboptimal reproductive efficiency in galicia, spain, veterinary microbiology. Vol. 80, pp: 275-284.
21
Haji Hajikolaei, M.R.; Ghorbanpour, M. and Abdollahpour, G., 2005. Serological study of Leptospirosis in cattle in Ahvaz. J Faculty of Vet Med, Univ Tehran. Vol. 60, pp: 7-15.
22
Herrmann-Stock, C. and Brioudes, A., 2005. Retrospective review of leptospirosis in Goadeloupe French West Indies 1994-2001.West Indian Med J. Vol. 54, No. 1, pp: 42-46.
23
Honarmand, HR. and Khayat, I., 2010. Isolation of phatogenic leptospires from blood samples of patients by PCR-RFLP method. J Gorgan Uni Med Sci. Vol. 12, No. 1, pp: 70-79.
24
Jor, I.F.; Galvez, H.; Mendoza, P.; Cespedes, M. and Mayor, P., 2009. Monitoring of leptospirosis seroprevalence in a colony of captive collared peccaries (Tayassu tajacu) from the Peruvian Amazon. Research in Veterinary Science. Vol. 86, pp: 383-387.
25
Lau, C.L.; Smythe, L.D.; Craig, S.B. and Weinstein, P., 2010. Climate change, flooding, urbanisation and leptospirosis: fuelling the fire? Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene. Vol. 104, pp: 631-638.
26
Levett, P.N., 2004. Leptospirosis: A forgotten zoonosis. Clinical and Applied Immunology Reviews. Vol. 4, pp: 435-448.
27
Lilenbaum, W.; Morais, Z.M.; Gonçales, A.P.; Souza, G.O.; Richtzenhain, L. and Vasconcellos, S.A., 2007. First isolation of leptospires from dairy goats in Brazil. Brazilian Journal of Microbiology. Vol. 38, pp: 507-510.
28
Momtaz, H. and Moshkelani, S., 2012. Detection and characterization of Leptospira spp. Isolated from aborted bovine clinical samples. Acta Vet. Brno J. Vol. 81, pp: 21-25.
29
OIE. 2008. 2nd Global Conference on Animal Welfare Putting the OIE Standards to Work Cairo (Egypt), 20-22 October.
30
Patel, J.M. and Vihol, P.D., 2016. Seroepidemiolgical study of leptospirosis in buffaloes of South Gujarat, India. Buffalo Bulletin.Vol. 35, No. 3, pp: 143-152.
31
Pinto Pda, S. and Lidonati, H., 2016. A systemic review on the microscopic agglutination test seroepidemiology of bovine leptospirosis in Latin America. Top Animal Health Pod. Vol. 48, No. 2, pp: 239-248.
32
Radostits, O.M.; Gay, C.C.; Hinchcliff K.W. and Constable, P.D., 2007. Veterinary Medicine. 10th ed. Elsevier. pp: 1094-1110.
33
Sakhaie, E. and Abdolahpour, A.M., 2007. Serologic and Bacteriologic diagnosis of bovine leptospirosis in Tehran suburb dairy farms. Iranian J.Vet.Res. Vol. 8, pp: 325-332.
34
Shoaiee, S., 1994. Seroepidemiological study f Leptospira infection in East Azarbaijan province. Dissertation for obtaining a doctoral degree in veterinary medicine. Islamic Azad University of Tabriz.
35
Suwancharoen, D. and Chaisak danugull, Y., 2013. Seroligical suryey of leptispirosis in livestock in Thailand.Epidemiol Infect. Vol. 141, No. 11, pp: 2269-2277.
36
Tangkanakul,W.;Tharmaphornpil,P.;Plikaytis,B.D.;Bragg, S.;Poonsuksombat, D. and Choomkasien, P., 2000. Risk factors associated with leptospirosis in northeastern Thailand, 1998. Am J Trop Med Hyg. Vol. 63, No. 3-4, pp: 204-208.
37
Tangkanakul, W. and Smits, H.L., 2005. Leptospirosis an emerging health problem in Thailand J Trop Med Public Health Mar. Vol. 36, No. 2, pp: 281-288.
38
Yousefivand, J.; Moradibidhendi,S. and Ahoorai,P. 1995. New findings about leptospirosis in the Razi Institute. Pajouhesh & Sazandegi. No. 25, pp: 72-75.
39
Zakeri, S.; Khorami, N.; Ganji, F.Z.; Sepahian, N.; Malmasi, A. and Gouya, M., 2010. Leptospira wolffi, a potential new pathogenic Leptospira species detected in human, sheep and dog. Research in Veterinary Science. Vol. 10, pp: 273-277.
40
Zavitansou, A. and Babatsikou, F., 2008. Leptospirisis epidemiology and preventive measure. Health Sci J. Vol. 2, No. 2, pp: 75-82.
41
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر سن اولین زایش بر عملکرد، مولفه های واریانس و روند ژنتیکی صفات تولیدی گاوهای هلشتاین استان اصفهان
هدف از تحقیق حاضر، بررسی اثر سن اولین زایش بر صفات تولیدی و برآورد مولفه های واریانس و روندهای ژنتیکی و فنوتیپی این صفات در کلاس های مختلف سن اولین زایش گاوهای هلشتاین استان اصفهان بود. در این تحقیق، از رکوردهای 49925 راس گاو متعلق به 64 گله که طی سال های 1385 تا 1394 زایش داشته اند، استفاده شد. سن اولین زایش گاوها که بین 20 تا 36 ماهگی بود به سه کلاس (20/5-23، 5-23/26، 26≤ ماه) تقسیم شد. آنالیز داده ها توسط رویه Mixed در نرم افزار آماریSAS9.2 انجام شد. برای برآورد مولفه های واریانس و ارزش های اصلاحی صفات تولید شیر با روش حداکثر درست نمایی محدود شده براساس مدل دام تک صفتی، از نرم افزارDMU استفاده شد. میانگین حداقل مربعات تولید شیر، مقدار چربی و پروتئین به ترتیب 38/2±10270، 1/5±249/2 و 9/4±270/1 کیلوگرم برای کلاس اول، 39/1±10179، 1/6±243/5 و 1/4±267/3 کیلوگرم برای کلاس دوم و 10017/9±44، 4/8±237/1 و 1/6±264/5 کیلوگرم برای کلاس سوم سن اولین زایش بوده و تفاوت آن ها معنی دار بود. مقدار وراثت پذیری این صفات به ترتیب 0/008±0/12، 0/008±0/34 و 0/012±0/23 برای کلاس اول، 0/005±0/14، 31/005±0/0 و 0/007±0/23 برای کلاس دوم و 0/006±0/11، 0/008±0/24 و 0/011±0/21 برای کلاس سوم برآورد شد. بیش ترین میانگین ارزش های اصلاحی صفات تولید شیر مربوط به کلاس های اول و دوم سن اولین زایش بودند که با کلاس سوم تفاوت معنی دار داشتند. نتایج تحقیق حاضر روی گاوهای هلشتاین استان اصفهان نشان داد که کاهش سن اولین زایش می تواند موجب افزایش تولید شیر، چربی و پروتئین و کاهش روند ژنتیکی این صفات گردد.
http://www.aejournal.ir/article_101547_b486df9e59698cf1efb11d9f0c0ac2ad.pdf
2019-12-22
53
60
سن اولین زایش
ارزش اصلاحی
روند ژنتیکی و فنوتیپی
مولفه های واریانس
گاو شیری
ربیع
رهبر
rahbarrabie@gmail.com
1
گروه کشاورزی، دانشگاه پیام نور، صندوق پستی 3697-19395 تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
اقبال، س.؛ مرادی شهربابک، م. و میرائی آشتیانی، س.ر.، 1382. مقایسه روش های مختلف ارزیابی اثر متقابل ژنوتیپ و محیط برای صفات تولیدی در گاوهای هلشتاین ایران. اولین کنگره علوم دامی و آبزیان کشور. صفحات 625 تا 627.
1
بختیاری زاده،م .ر.؛ مرادی شهربابک، م، پاکدل، ع. و مقیمی، ا.، 1388. برآورد پارامترهای ژنتیکی صفات تیپ، تولید شیر و روزهای باز در گاوهای هلشتاین ایران. مجله علوم دامی ایران. شماره 40، صفحات 13 تا 19.
2
خلج زاده، س.، 1393. برآورد پارامترهای ژنتیکی سن اولین زایش و تاثیر آن بر صفات تولیدی گاو شیری هلشتاین. نشریه علوم دامی (پژوهش و سازندگی). شماره 103، صفحات 15 تا 24.
3
رزم کبیر، م.؛ نجاتی جوارمی، ا.؛ مرادی شهربابک، م.؛ رشیدی، ا. و صیادنژاد، م.ب.، 1388. برآورد روند ژنتیکی صفات تولیدی گاوهای هلشتاین ایران. مجله علوم دامی ایران. شماره 40، صفحات 7 تا 11.
4
رضوی، س.م.؛ وطن خواه، م.؛ میرزایی، ح.ر. و رکوعی، م.، 1386. براورد روند ژنتیکی صفات تولیدی در گاوهای هلشتاین استان مرکزی. نشریه علوم دامی (پژوهش و سازندگی). شماره 77، صفحات 55 تا 62.
5
شهدادی، ع.؛ حسنی، س.؛ ساقی، د.ع.؛ آهنی آذری، م.؛ اقبال، ع. و رحیمی، ع.، 1393. برآورد پارامترهای زنتیکی صفات تولیدی و تولیدمثلی دوره اول شیردهی در گاوهای هلشتاین ایران. نشریه پژوهش در نشخوارکنندگان. شماره 4، صفحات 109 تا 126.
6
صاحب هنر، م.؛ مرادی شهربابک، م.؛ میرائی آشتیانی، س.ر. و صیادنژاد، م.ب.، 1389. برآورد روند ژنتیکی صفات تولیدی و تعیین برخی عوامل تاثیرگذار برآن در گاوهای هلشتاین ایران. مجله علوم دامی ایران. شماره 41، صفحات 173 تا 184.
7
طهماسبی، ع.؛ فرهنگ فر، ه.؛ جرجانی، ع. و نعیمی پوریونسی، ح.، 1383. برآورد پارامترهای ژنتیکی صفات تولید شیر و درصد چربی گاوهای هلشتاین در استان گلستان و مازندران با استفاده از مدل های دامی یک و چند متغیره. اولین کنگره علوم دامی و آبزیان کشور. 770 صفحه.
8
فرهنگ فر، ه. و نعیمی پوریونسی، ح.، 1386. برآورد پارامترهای فنوتیپی و ژنتیکی صفات تولید و تولیدمثل در نژاد گاو هلشتاین ایران. علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی. شماره 1، صفحات 431 تا 440.
9
لطفی نوقابی، ر.؛ فرهنگ فر، ه. و صیادنژاد، م.ب.، 1387. برآورد وراثت پذیری صفات تولید شیر، چربی و پروتئین تصحیح شده 305 روز 2 بار دوشش معادل بلوغ در فصول مختلف زایش گاو هلشتاین ایران. سومین کنگره علوم دامی کشور. ردیف: 66.
10
مهربان، ح.؛ اسماعیلی فرد، س.م.؛ نجفی، م.؛ عباسی مشائی، ب. و اسدی خشوئی، ا.، 1393. تحلیل ژنتیکی عملکرد گاوهای هلشتاین در ایران برای صفات تولید شیر و روزهای باز در پنج دوره اول شیردهی. نشریه علوم دامی ایران. شماره 1، صفحات 27 تا 36
11
نافذ، م.؛ زره داران، س.؛ حسنی، س. و سمیعی، ر.، 1391. ارزیابی ژنتیکی صفات تولیدی و تولیدمثلی در گاوهای هلشتاین شمال کشور. پژوهش های علوم دامی ایران. شماره 1، صفحات 69 تا 77.
12
نعیمی پوریونسی، ح.؛ شریعتی، م.م. و شهدادی، ع.، 1394. اثر سن اولین زایش بر صفات تولید شیر گاوهای شیری در اقلیم نیمه خشک ایران. نشریه علوم دامی (پژوهش و سازندگی). شماره 109، صفحات 143 تا 152.
13
Bewley, J.; Palmer, R.W. and Jackson-Smith, D.B., 2001. Modeling milk production and labor efficiency in modernized Wisconsin dairy herds. Journal of Dairy Science. Vol. 84, pp: 705-716.
14
Castillo-Juarez, H.; Oltenacu, P.O.; Blake, R.W.; Mcculloch, C.E. and Cienfuegos-Rivas, E.G., 2000. Effect of herd environment on the genetic and phenotypic relationships among milk yield, conception rate and somatic cell score in Holstein cattle. Journal of Dairy Science. Vol. 83, pp: 807-814.
15
Dematawewa, C.M.B. and Berger, P.J., 1998. Genetic and phenotypic parameters for 305-day yield, fertility, and survival in Holsteins. Journal of Dairy Science. Vol. 81, pp: 2700-2709.
16
DeGroot, B.J.; Keown, J.F.; Van Vleck, L.D. and Marotz, E.L., 2002. Genetic parameters and responses of linear type, yield traits, and somatic cell scores to divergent selection for predicted transmitting ability for type in Holsteins. Journal of Dairy Science. Vol. 85, pp: 1578-1585.
17
Gardner, R.W.; Smith, L.W. and Park, R.L., 1988. Feeding and management of dairy heifers for optimal lifetime productivity. Journal of Dairy Science. Vol. 71, pp: 996-999.
18
Gröhn, Y.T. and Rajala-Schultz, P.J., 2000. Epidemiology of reproductive performance in dairy cows. Animal Reproduction Science. Vol. 60-61, pp: 605-614.
19
Hare, E.; Norman, H.D. and Wright, J.R., 2006. Trends in calving ages and calving intervals for dairy cattle breed in the United States. Journal of Dairy Science. Vol. 89, pp: 365-370.
20
Heinrichs, A.J., 1993. Raising dairy replacement to meet the need of the 21st century. Journal of Dairy Science. Vol. 76, pp: 3179-3187.
21
Hoffman, P.C.; Brehm, N.M.; Price, S.G. and Prill Adams, A., 1996. Effect of accelerated postpubertal growth and early calving on lactation performance of primiparous Holstein heifer. Journal of Dairy Science. Vol. 79, pp: 2024-2031.
22
Hoffman, P.C., 1997. Optimum body size of Holstein replacement heifers. Journal of Animal Science. Vol. 75, pp: 836-845.
23
Kadarmideen, H.N.; Thompson, R.; Coffey, M.P. and Kossaibati, M.A., 2003. Genetic parameters and evaluations from single and multiple trait analysis of dairy cow fertility and milk production. Livestock Production Science. Vol. 81, pp: 183-195.
24
Losinger, W.C. and Heinrichs, A.J., 1996. Dairy operation management practices and herd milk production. Journal of Dairy Science. Vol. 79, pp: 506-514.
25
Madsen, P. and Jensen, J., 2007. A user's guide to DMU. University of Aarhus, DJF, Research Centre Foulum, Denmark.
26
Makgahlela, M.L.; Banga, C.B.; Norris, D.; Dzama, K. and Ngambi, J.W., 2008. Genetic Analysis of Age at First Calving and Calving Interval in South African Holstein Cattle Asian. Journal of Animal and Veterinary Advances. Vol. 3, pp: 197-205.
27
Microsoft, 2012. Microsoft SQL Server Management Studio.
28
Mourits, M.C.M.; Dijkhuizen, A.A.; Hurine, R.B.M. and Galligan, D.T., 1997. Technical and economic models to support heifer management decisions: basic concepts. Journal of Dairy Science. Vol. 80, pp: 1406-1415.
29
Nilforooshan, M.A. and Edriss, M.A., 2004. Effect of age at first calving on some productive and longevity traits in Iranian Holsteins of the Isfahan Province. Journal of Dairy Science. Vol. 87, pp: 2130-2135.
30
Ojango, J.M.K. and Pollott, G.E., 2001. Genetics of milk yield and fertility traits in Holstein-Friesian cattle on large scale Kenyan farms. Journal of Animal Science. Vol. 79, pp: 1742-1750.
31
Olori, V.E.; Meuwissen, T.H.E. and Veerkamp R.F., 2002. Calving interval and survival breeding values as measure of cow fertility in a pasture-based production system with seasonal calving. Journal of Dairy Science. Vol. 85, pp: 689-696.
32
Pirlo, G., 1997. Rearing cost of replacement heifer and optimal age at first calving. (In Italian) Supplement of L’Informatore Agrario. Vol. 37, pp: 9-12.
33
Pirlo, G.; Miglior, F. and Speroni, M., 2000. Effect of age at first calving on production traits and on difference between milk yield returns and rearing costs in Italian Holsteins. Journal of Dairy Science. Vol. 83, pp: 603-608.
34
SAS. SAS Institute Inc. 2008. SAS 9.2 Help and Documentation. Cary, NC: SAS.
35
Weller, J.I. and Ezra, E., 2004. Genetic analysis of the Israeli Holstein dairy cattle population for production and nonproduction traits with a multi trait animal model. Journal of Dairy Science. Vol. 87, pp: 1519-1527.
36
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثرات متقابل منبع غلات و نسبت علوفه به کنسانتره بر فراسنجههای خونی و عملکرد تولیدمثلی در میشهایی که هم زمانسازی فحلی شدهاند
این پژوهش با هدف مطالعه تاثیر منبع غلات و نسبت متفاوت علوفه به کنسانتره بر فراسنجههای خونی و عملکرد تولیدمثلی در میشهای فحل هم زمان نژاد زندی بود. 80 رأس میش زندی در چهار گروه مختلف جهت هم زمانسازی فحلی، سیدرگذاری شدند. تیمارهای آزمایشی شامل: 1: نسبت بالای علوفه به کنسانتره (35: 65) همراه با جو به عنوان منبع غلات، 2: نسبت بالای علوفه به کنسانتره (35: 65) همراه با ذرت به عنوان منبع غلات، 3: نسبت پایین علوفه به کنسانتره (55: 45) همراه با جو به عنوان منبع غلات، 4: نسبت پایین علوفه به کنسانتره (55: 45) همراه با ذرت به عنوان منبع غلات. در تمام تیمارهای مدنظر هم زمانسازی فحلی انجام شد. پس از برداشت سیدر، میشها فحلیابی شدند و با قوچهای موجود در گله جفتگیری کردند. پس از زایش فراسنجههای مدنظر مورد بررسی قرار گرفت. نتایج نشان داد که به جز فراسنجههای BUN و پروژسترون که با تمایل به معنی داری دیده میشود در مورد آنزیمهای کبدی، گلوکز و هورمون استروژن در بین تیمارها دارای اثر معنی داری نبودند. نتیجه تحقیق حاضر نشان داد که نسبت بالای علوفه به کنسانتره همراه با ذرت به عنوان منبع غلات در صفات تولیدمثلی دارای موقعیت برتر و بهتری نسبت به سایر گروههای آزمایشی بود.
http://www.aejournal.ir/article_101550_fcb4ea2a448216bf47dd89d6a4163393.pdf
2019-12-22
61
66
هم زمانسازی فحلی
غله
علوفه
میش
مهدی
خدایی مطلق
mmotlagh2002@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه اراک، اراک، ایران
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
بهرامی
rb907272@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه اراک، اراک، ایران
AUTHOR
مهدی
میرزایی
mirzaee.1983@gmail.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه اراک، اراک، ایران
AUTHOR
محمدحسین
مرادی
moradi.hosein@gmail.com
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه اراک، اراک، ایران
AUTHOR
ایری، س.؛ صمدی، ف. و حسنی، س.، 1393. مطالعه ارتباط بین غلظتهای استروژن، پروژسترون، نیتروژن اورهای، گلوکز، کلسترول و تری گلیسیرید سرم خون با برخی پارامترهای تولیدمثلی در دوره پس از زایش گاوهای شیری. دوره 24، شماره 2، صفحات 73 تا 81.
1
آرتور، ج.، 1996. تولیدمثل و مامایی دامپزشکی، ترجمه علوی شوشتری، س.م.، انتشارات دانشگاه ارومیه. صفحات 75 تا 293.
2
فروزنده، ا.د.؛ سمیع، ع. و قربانی، غ.،1380. بررسی توان پرواری گوسفندان نایینی با استفاده از جیره های حاوی سطوح مختلف انرژی و پروتئین. علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی. دوره 5، صفحات 149 تا 160.
3
یوسفدوست، س.؛ صمدی، ف.؛ مقدم، غ.؛ حسنی، س. و جعفری، ی.، 1390. ارزیابی هورمون های استرادیول 17-بتا، پروژسترون و نیتروژه اورهای در گاوهای هلشتاین شیرده، یک شکم زاییده و چند شکم زاییده مبتلا به کیست تخمدانی. پژوهش های علوم دامی. دوره 21، شماره 2، صفحات40 تا 57.
4
Amarantidis, I.; Karagiannidis, A.; Saratsis, Ph. And Brikas, P., 2004. Efficiency of methods used for estrus synchronization in indigenous Greek goats: Small Ruminant Research. Vol. 52, pp: 247-252.
5
Butler, W.R., 1998. Symposium: optimizing protein nutrition for reproduction and lactation. Review: Effect of protein nutrition on ovarian and uterine physiology in dairy.
6
Butler, W.R.; Calaman, J.J. and Beam, S.W., 1996. Plasma and milk urea nitrogen in relation to pregnancy rate in lactating dairy cattle: Journal of Animal Science. Vol. 74, pp: 858-865.
7
Dogan, I.Z.; Nur, H.; Gunay, H.; Sagirkaya, M.; Soylu, K. and Sonmez, C., 2005. Estrous synchronization on during the natural breeding season in Anatolian black dose: Veterinary Medecinal Czech. Vol. 50, pp: 33-38.
8
Elrod, C.C. and Butler, W.R., 1993. Reduction of fertility and alteration of uterine pH in heifers fed excess ruminally degradable protein: Journal of Animal Science. Vol. 71, pp: 694-701.
9
Kauffman, A.J. and St-pierre, N.R., 2001. The relationship of milk urea nitrogen to urinenitrogenexcretion inHolsteinand jersey cows: Journal of Dairy Science. Vol. 84, pp:2284-2294.
10
Letelier, C.; Gonzalez-Bulnes, A.; Herve, M.; Correa, J. and Pulido, R., 2008. Enhancement ofOvulatory Follicle Development in Median Sheep by Short Term Supplementation with Steam-flakedCorn: Reproduction in Domestic Animals. Vol. 48, pp: 222-227.
11
Lucy, M.C., 2003. Mechanisms linking nutrition and reproduction in postpartum cows: Journal of Reproduction Supplement. Vol. 61, pp:415-427.
12
McEvoy T.G.; Robinson, J.J.; Aitken, R.P.; Findlay, P.A.andRobertson, I.S., 1997. Dietary excesses of urea influence the viability and metabolism of preimplantation sheep: Animal Reproduction Science. Vol. 47, pp:71-90.
13
Melendez, P.; Donovan, A. and Hernandez, J., 2000. Milk Urea Nitrogen and Infertility in FloridaHolstein Cows: Journal Dairy Sciences. Vol. 83, pp:459-463.
14
Rhoads, M.L.; Gilbert, R.O.; Lucy, M.C. and Butler, W.R., 2004. Effect of urea infusion on the uterine luminal environment of dairy cows: Journal of Dairy Science. Vol. 87, pp:2896-2901.
15
Rhoads, M.L.; Rhoads, R.P.; Gilbert, R.O.; Toole, R. and Butler,W.R., 2005. Detrimental effects of high plasma urea nitrogen levels on viability of embryos from lactating dairy cows: Animal Reproduction Science. Vol. 91, pp: 1-10.
16
Robertson, J.A. and Hinch, G.N., 1990. The effect of lupin feeding on embryo mortality. Proceeding of Australian Society of Animal Production. Vol. 18, 544 p.
17
Ryan, D.P.; Spoon, R.A. and Williams, GL., 1992. Ovarian follicular characteristics, embryo recovery, and embryo viability in heifers fed high-fat diets and treated with follicle stimulating hormone: Journal of Animal Science. Vol. 70, pp: 3505- 3513.
18
Scaramuzzi, RJ.; Campbell, B.K.; Downing, J.A.; Kendall, N.R., Khalid, M; Muñoz-Gutiérrez, M. and Somchit, A., 2006. A review of the effects of supplementary nutrition in the ewe on the concentrations of reproductive and metabolic hormones and the mechanisms that regulate folliculogenesis and ovulation rate: Reproduction Nutrition Development. Vol. 46, pp: 339-354.
19
Suresh Kumar, P.; Pasupathy, K.; Suresh Kumar, P.; Veeramani, P.; Vasanthakumar, K. and Gopi, H., 2018. Effect of concentrate feed supplementation during different physiological stages in Madras Red Sheep. Indian Journal of Animal Research. Vol. 52, pp: 564-568.
20
Tohidi, A.; Khazali, H.; Nikkhah, A.; Niasari, A. and Zhandi, M., 2006. Effect of increasing dietaryenergy in short term on gonadotropins secretion and ovulation rate in Chal breed ewes: Iranian Journal of Agricultural Sciences. Vol. 4, pp: 904-911.
21
Vinoles, C.; Forsberg, M.; Martin, G.B.; Cajarville, C.; Repettoand, J. and Meikle, A., 2005. Short-termnutritional supplementation of ewes in low body condition affects follicle development due to an increase in glucose and metabolic hormones: Reproduction. Vol. 129, pp: 229-309.
22
Wildeus, S., 1999. Current concepts in synchronization of estrus: Sheep and goats. Proceedings of the American Society of Animal Science. pp: 1-14. http://jas.fass.org/content/77/E-Suppl/1.40
23
ORIGINAL_ARTICLE
تحلیل عوامل زیست محیطی و مدیریتی موثر بر توسعه سوارکاری
یکی از محورهای اصلی توسعه پایدار در ورزش، پایداری زیست محیطی است. هدف از اجرای تحقیق حاضر شناسایی عوامل زیست محیطی و مدیریتی موثر بر توسعه سوارکاری میباشد. روش تحقیق از نوع توصیفی- پیمایشی و رویکرد انجام تحقیق، آمیخته اکتشافی بود. جامعه آماری تحقیق در مرحله کیفی، 26 خبره در عرصه ورزش سوارکاری بود. روایی پرسشنامه با استفاده از نظر خبرگان (17 نفر) و تحلیل عاملی اکتشاف (0/87) قرار گرفته و پایایی آن نیز با استفاده از آلفای کرونباخ (0/92) گزارش شد. به منظور شناسایی روندهای موثر بر سوارکاری و جهت تجزیه و تحلیل دادهها از تحلیل عاملی اکتشافی با استفاده از نرم افزار SPSS25 استفاده شد. یافته ها نشان داد که از بین 25 روندی که در قالب سه پیشران مدیرتی، محیط زیست و کالبدی به صورت طیف لیکرت در اختیار جامعه مورد نظر قرار گرفت، پنج عامل برون سپاری، ورود بخش خصوصی، توسعه گردشگری، حمایت از پرورش دهندگان داخلی و طراحی اماکن با حفظ محیط زیست در سوارکاری شناسایی گردید. مدیریت واحد و اهمیت به صنعت گردشگری اسب می تواند گامی موثر در حفظ محیط زیست با محوریت اسب و توسعه رشد اقتصادی داشته باشد.
http://www.aejournal.ir/article_101713_282941ff05873f8dec4a190e83fb492b.pdf
2019-12-22
67
76
اسب
ورزش سوارکاری
عوامل زیست محیطی
عوامل مدیریتی
علی
چوری
alichorli@yahoo.com
1
گروه تربیت بدنی دانشکده علوم انسانی و علوم ورزشی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
LEAD_AUTHOR
سید محمد حسین
رضوی
razavismh@yahoo.com
2
گروه مدیریت ورزشی دانشکده تربیت بدنی، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران
AUTHOR
مرتضی
دوستی
dostipasha@yahoo.com
3
گروه مدیریت ورزشی دانشکده تربیت بدنی، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران
AUTHOR
فرزام
فرزان
farzamfarzan@yahoo.com
4
گروه مدیریت ورزشی دانشکده تربیت بدنی، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران
AUTHOR
احمدوند، م.ر.، 1374. تجزیه و تحلیل خصوصی سازی و اقتصادی، اجتماعی و روند فرهنگی در طی اولین برنامه پنج ساله. مدیریت ورزشی دانشگاه تهران.
1
اسدی، ح.؛ فرزیانی، ف.؛ فراهانی، ا. و یوسفی، ح.، 1394. اثرات برون سپاری بر مدیریت اماکن ورزشی از دیدگاه مدیران ورزش. مطالعات مدیریت رفتار سازمانی در ورزش. دوره 5، شماره 2، صفحات 47 تا 55.
2
امیری، م.؛ نیری، ش.؛ صفاری، م. و دلبری راغب، ف.، 1391. تبیین و اولویت بندی موانع فراروی خصوصی سازی و مشارکت بخش خصوصی در توسعه ورزش. مدیریت ورزشی. دوره 5، شماره 4، صفحات 83 تا 106.
3
امیری، م.؛ نیری، ش.؛ صفاری، م. و دلبری راغب، ف.، 1391. رسانه و توسعه مشارکت بخش خصوصی در ورزش کشور. فصلنامه پژوهشهای ارتباطی. دوره 69، شماره 1، صفحات 9 تا 38.
4
پایگاه اطلاعرسانی معاونت اجرایی ریاست جمهوری. 1389. قانون تنظیم بخشی از مقررات مالی دولت، {وبسایت بر روی اینترنت}.
5
جوانمردی، ب. و باقری، ه.، 1392. مقایسه وضعیت ایمنی و بهداشتی اماکن سرپوشیده ورزشی اداره کل تربیت بدنی و سازمان آموزش و پرورش استان همدان با استانداردها، پژوهش در مدیریت ورزشی و رفتار حرکتی. دوره 5، شماره 3، صفحات 26 تا 35.
6
حجی پور، ع. و اسدی دستجردی، ح.، 1393. تحلیل وضعیت بهداشتی-زیست محیطی اماکن ورزشی و رابطة آن با میزان مشارکت در فعالیت بدنی شهروندان استان های خراسان، مدیریت ورزشی. دوره 9، شماره 1، صفحات 33 تا 44.
7
درمحمدی، ع.؛ فام، م. و زارعی، ا.، 1395. ارائه یک الگوی کاربردی برای ارزیابی عملکرد HSE پیمانکاران ساخت و ساز. مجله سلامت کار ایران. دوره ، شماره 6، صفات 71 تا 85.
8
ذوالاکتاف، و.، 1381. نیاز انتقال بخش عمده ای از ورزش به بخش خصوصی. خبرگزاری دانشجویان ایران (ISNA).
9
رحیم زاده، ر.؛ جهانشاهی، ا. و عبیدی، ش.، 1392. ارزیابی رادیوگرافی رویداد اسب های کرد و درجه شکستگی گردن. نشریه تحقیقات بالینی حیوانات. دوره 7، شماره 1، صفحات 19 تا 26.26.
10
رضوی، س.م.ح.، 1385.خصوصی سازی، تمرکززدایی و انتقال وظایف ورزش قهرمانی به کمیته ملی المپیک، المپیک. شماره33، صفحات 7 تا 65.
11
سقایی، م.، 1386. نیازسنجی اکوتوریسم در ایران: توریسم و توسعه پایدار. مجموعه مقالات کنفرانس بین المللی جغرافیا. دانشگاه آزاد شهر ری. صفحات 43 تا 56.
12
ضمیری، ا. و رایگان، پ.، 1390. موانع روند خصوصی سازی در ایران و جهان، کنفرانس ملی خصوصی سازی در ایران. دانشگاه آزاد اسلامی سمنان، صفحات 70 تا 76.
13
عباسی، ط.؛ قاسمعلی، ج. و آذری، ح.، 1395. نقشآفرینی سازمانهای دولتی در بهره وری سبز؛ از نگاه مدیریت منابع انسانی سبز. سومین کنفرانس بین المللی اقتصاد سبز. بابلسر: شرکت پژوهشی صنعتی طرود شمال.
14
عظیمی دلارستاقی، ع.؛ رضوی، س.م.ح. و برومند، م.، 1392. بررسی معیارهای مکان یابی در طراحی و ساخت اماکن ورزشی شهری. مدیریت ورزشی و رفتار حرکتی .12 صفحه.
15
الفت، ل.؛ براتی، م. و ولدی، م.ر.، 1391. چهارچوبی برای تصمیم برون سپاری راهبردی. سازمان مدیریت صنعتی، شماره 25.
16
فروغی پور، ح.؛ صابونچی، ر. و تیپ، ه.، 1390. ارزیابی بهره وری اماکن ورزشی از دیدگاه دبیران تربیت بدنی همدان. نشریه مدیریت ورزشی. دوره 5، شماره 11، صفحات 77 تا 98.
17
قاسمی،ح.، 1387. نقش رسانه ها در خصوصی سازی فوتبال. همایش بین المللی خصوصی سازی فوتبال. دانشگاه تربیت مدرس، تهران.
18
کابلی زاده، ا.، 1384. خصوصی سازی مردمی، کارایی همراه با عدالت. تهران: مرکز پژوهش های مجلس شورای اسلامی.
19
قاضی زاده فرد، س.ض.؛ احمدوند، ع.م. و غلامی، ا. ح.، 1390. طراحی الگوی تصمیم گیری برون سپاری فعالیت های بخش نگه داری و تعمیرات، توسعة انسانی پلیس. شماره 31.
20
قاضی زاده فرد، س.ض. و اتابکی، م.س.، 1391. معرفی الگوی برون سپاری در سازمان های نظامی، راهبرد دفاعی. شمارة 39.
21
قره باش، ع.م.، 1395. نقش پرورش اسب در توسعه گردشگری و اشتغال زایی استان گلستان. دومین همایش ملی اقتصاد کلان ایران. صفحات 1 تا 5.
22
لاجوردی، س.ج. و بوالهری، ع.، 1389. ارائه مدلی جهت شناسایی فرایندهای کاندیدای برون سپاری در سازمان بر مبنای رویکرد کارت امتیازات متوزان و ماتریس استراتژی های برون سپاری. مدیریت دولتی. دوره 5، شماره 2، صفحات 143 تا 158.
23
مظفری، ا.ا.، 1388. طراحی و مدیریت تأسیسات و اماکن ورزشی. تهران. پژوهشکده تربیت بدنی و علوم ورزشی، چاپ اول.
24
مولادوست، ک. و مقدسی، ر.، 1394. روشهای توسعه صنعت اسب ایران. دومین همایش ملی نوین در کشاورزی. صفحات 25 تا 27.
25
Arulrajah, A.A.; Opatha, H.H.D.N.P. and Nawaratne, N.N.J., 2015. Green human resource management practices: A review. Sri Lankan Journal of Human Resource Management. Vol. 5, No. 1, pp: 123-140.
26
Barros, C.P., 2006. The financial crisis in portuguese football, Journal of sport economics. Vol. 7, No. 1, pp: 96-104.
27
BonoRoberto, A.; Raffaella. Degan, A.; Marco Pazzi, B.; Valeria Romanazzi, A. and Renato, R., 2010. Benzene and formaldehyde in air of two winter Olympic venues of Torino 2006.journal home page: www.elsevier.com/locate/ envint.
28
Butler, M.J., 2003. Managing from the inside out: drawing on receptivity’to explain variation in strategy implementation. British Journal of Management. Vol. 14, No. 1, pp: 47-60.
29
Fang, S. and Chen, Y., 2012. Participation of the Private Organization on the Marketization Management of the Sport Facility [J].
30
FEI. 2012. Equestrian & Games. Available: http://www. horsesport.org/events/games. Accessed 16 October 2012.
31
FITE. 2012. International Federation of Equestrian Tourism.Available. http://en.fite-et.org/content/view/full /12260.
32
Hofstee, W., 2008. Trends and Opportunities for Equestrian Tourism. International Congress for EquestrianTourism, Portugal.2008.Available:http://www.equestriantourism.com/ downloads/Wendy%20Hofstee%20Unicorn%20Trails.pdf. Accessed 15 October 2012.
33
ICRT. 2012. The International Center for Responsible Tourism: Poor Response to Market Needs in Equestrian Tourism. Available: Journal of Tianjin University of Sport, 1,007.
34
ttp://www.icrtourism.org/poor-response-to market-needs-in-equestrian-tourism.
35
Keaveney, S.M., 2007. Equines and their human companions. Available: http://www.sciencedirect.com /science/article/pii/S0148296307002196.
36
Liu, Z., 2011. Marketing Outsourcing of Chinese Sports Clubs: A SWOT-AHP. Analysis. In 2011 Fourth International Conference on Business Intelligence and Financial Engineering IEEE. pp: 169-174.
37
Miraglia, N.; Martin-Rosset, W. and Saastamoinen, M., 2010. Role of equids in socio economy and human wellbeing, Session 1: Activities promoting socio economy. Horse Commission, Horse Network Workshop, 26 April 2010 Heraklion, Greece.
38
Muller, H., 2010. The Social Impact of the Horse Sector in Europe. European Horse Network Conference, Brussels. Available: http://www.europeanhorsenetwork.eu/uploads/ PDF/Harald%20Muller.pdf
39
Ollenburg, C., 2005. Worldwide structure of the equestrian tourism sector. Journal of Ecotourism. Vol. 4, No. 1, pp: 47-55.
40
Pascual, C.; Enrique, R.; David, M.; Elisa, C.M. and Vicente, D., 2009. Socioeconomic environment, availability of sports facilities, and jogging, swimming and gym use. Journal homepage: www.elsevier.com/locate/healthplace. Health & Place. Vol. 15, pp: 553-561.
41
Riders, H., 2011. Equestrian Sport Statistics & Facts – What You Should Know. Available: http://www.riders4helmets. com/equestrian-sport-statistics-facts-what-you should know.
42
Sartore-Baldwin, M.L. and McCullough, B., 2018. Equity based sustainability and ecocentric management: Creating more ecologically just sport organization practices. Sport Management Review. Vol. 21, No. 4, pp: 391-402.
43
Schmudde, R., 2015. Equestrian Tourism in National Parks and Protected Areas in Iceland. An Analysis of the Environmental and Social Impacts. Scandinavian Journal of Hospitality and Tourism. Vol. 15, No. 1-2, pp: 91-104.
44
Sigurðardóttir, I., 2018. Wellness and equestrian tourism new kind of adventure. Scandinavian Journal of Hospitality and Tourism.
45
Sudin, S., 2011. Strategic green HRM: A proposed model that supports corporate environmental citizenship. In International Conference on Sociality and Economics Development, IPEDR. Vol. 10, pp: 79-83.
46
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر عصاره هیدروالکلی شقایق کوهی (Glaucium flavum) بر غلظت سرمی TSH در موش های صحرایی دیابتی شده با آلوکسان
اختلال در ترشح TSH از غده هیپوفیز همواره یکی از عوارض بحث برانگیز دیابت بوده است. این مطالعه به منظور بررسی تاثیر عصاره خوراکی گیاه شقایق کوهی بر هورمون TSH در موشهای نر مبتلا به دیابت در مقایسه با موشهای سالم میباشد. در این مطالعه تجربی، 56 سر موش صحرایی نر بالغ نژاد ویستار به صورت تصادفی در 7 گروه 8 تایی تقسیم شدند: شاهد، سالم تیمار با عصاره شقایق کوهی به دوزهای 250 و 500 میلی گرم بر کیلوگرم، شاهد دیابتی، دیابتی تیمار با عصاره به دوزهای 250 و 500 میلی گرم بر کیلوگرم و دیابتی تیمار با داروی گلیبنکلامید با دوز 5 میکروگرم برکیلوگرم. دیابت با تزریق تک دوز آلوکسان القاء گردید. پس از گذشت 30 روز نمونههای خون جمع آوری و غلظت TSH سرمی اندازه گیری شد و در نهایت، دادهها با استفاده از آزمون آنالیز واریانس یک طرفه مورد تجزیه و تحلیل آماری قرار گرفت. نتایج نشان میداد که میانگین گروه دیابتی+250 به طور معنی داری از گروه شاهد دیابتی بیش تر است (0/001>P)، هم چنین میانگینها در دو گروه دیابتی+500 و دیابتی+دارو فاقد رابطه معنی دار با گروه شاهد بودند (0/05<P). جمع بندی نتایج حاکی از آن است که، عصاره شقایق کوهی احتمالاً قادر به افزایش سطح TSH خون در موش های دیابتی بوده به نحوی که در دوز بیش تر خود می تواند این عارضه را تا سطح گروه شاهد بهبود بخشد.
http://www.aejournal.ir/article_101889_436c6539e837c115f916c46d226d269f.pdf
2019-12-22
77
82
دیابت
شقایق کوهی
TSH
آلوکسان
موش صحرایی
علی رضا
بانشی
dvm.alireza2011@yahoo.com
1
دانشکده دامپزشکی، واحد کازرون، دانشگاه آزاد اسلامی، کازرون، ایران
AUTHOR
اردوان
نوروزی اصل
nowroozia@yahoo.com
2
گروه علوم بالینی، دانشکده دامپزشکی، واحد کازرون، دانشگاه آزاد اسلامی، کازرون، ایران
AUTHOR
غلامحسین
دریا
ghdarya88@gmail.com
3
باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد کازرون، دانشگاه آزاد اسلامی، کازرون، ایران
LEAD_AUTHOR
سیده مریم
موسوی
m.mosavi7117@yahoo.com
4
دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
Ala, S.; Akha, O.; Kashi, Z.; Bahar, A.; Askari Rad, H.; Sasanpour, N. and Shiva, A., 2015. Changes in Serum TSH and T4 Levels after Switching the Levothyroxine Administration Time from before Breakfast to before Dinner. International Journal of Endocrinology. Vol. 15, pp: 1-5.
1
Bercu, R.; Fãgãraş, M.; Jianu, L. and Dana, M., 2006. Anatomy of the endangered plant Glaucium flavum Cr., occurring on the Romanian Black Sea littoral Nature Conservation. pp: 273-280
2
Boelen, A.; Wiersinga, W. and Fliers, E., 2008. Fasting-Induced Changes in the Hypothalamus–Pituitary–Thyroid Axis. Thyroid. Vol. 18, No. 2, pp: 123-129.
3
Cabo, J.; Cabo, P.; Jimenez, J. and Zarzuelo, A., 1988. Glaucium flavum Crantz. Part v: Hypoglycemic activity of the aqueous extract. Phytotherapy Research. Vol. 2, No. 4, pp: 198-200.
4
Chia, C.; Chena, W.; Chic, T.; Kuod, T.; Leeb, S. and Chenge, J., 2007. phosphatidylinositol -3- kinase is involved in the antihyperglycemic effect induced by resveratril in streptozotocin induced rats. Life Science. Vol. 80, pp: 1713-1720.
5
Cortijo, J.; Villagrasa, V.; Pons, R.; Berto, L.; Martí Cabrera, M.; Martinez‐Losa, M. and Domenech, T., 1999. Bronchodilator and anti‐inflammatory activities of glaucine: In vitro studies in human airway smooth muscle and polymorphonuclear leukocytes. British journal of pharmacology. Vol. 127, No. 7, pp: 1641-1651.
6
Dargan, P.; Button, J.; Hawkins, L.; Archer, J. R.; Ovaska, H.; Lidder, S. and Ramsey, J., 2008. Detection of the pharmaceutical agent glaucine as a recreational drug. European Journal of Clinical Pharmacology. Vol. 64, No. 5, pp: 553-554.
7
Everson, A.; Nowak, J. and Thaddeus, S., 2002. Hypothalamic thyrotropin-releasing hormone mRNA responses to hypothyroxinemia induced by sleep deprivation. American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. Vol. 283, No. 1, pp: 85-93.
8
Gardner, D.G. and Shoback, D.M., 2017. Greenspan's Basic and Clinical Endocrinology, 10th Ed. McGraw-Hill Education. pp: 681-683.
9
GonzÁLez, C.; Montoya, E.; Jolin, T. and Gonzalez, 1980. Effect of Streptozotocin Diabetes on the Hypothalamic Pituitary-Thyroid Axis in the Rat. Endocrinology. Vol. 107, No. 6, pp: 2099-20103.
10
Gurzov, E.; Stanley, j.; Pappas, G.; Thomas, E. and Gough, D. J., 2016. The JAK/STAT pathway in obesity and diabetes. The FEBS journal. Vol. 283, No. 16, pp: 3002-3015.
11
Guyton M. and Hall, J.E., 2015. Guyton and Hall Textbook of Medical Physiology: Elsevier Health Sciences. pp: 912-915.
12
Gyurkovska, V.; Philipov, S.; Kostova, N. and Ivanovska, N., 2015. Acetylated derivative of glaucine inhibits joint inflammation in collagenase-induced arthritis. Immunopharmacology and immunotoxicology. Vol. 37, No. 1, pp: 56-62.
13
Hasani-Ranjbar, S.; Larijani, B. and Abdollahi, M., 2008. A systematic review of Iranian medicinal plants useful in diabetes mellitus. Archives of Medical Science. Vol. 4, No. 3, pp: 285.
14
Kesavadev, J., 2017. Efficacy and safety concerns regarding complementary and alternative medicine use among diabetes patients. JPMA. Vol. 67, pp: 316-319.
15
Lenzen, S., 2008. The mechanisms of alloxan-and streptozotocin-induced diabetes. Diabetologia. Vol. 51, No. 2, pp: 216-26.
16
Maratou, E.; Hadjidakis, D.; Peppa, M.; Alevizaki, M.; Tsegka, K.; Lambadiari, V. and Mitrou, P., 2010. Studies of insulin resistance in patients with clinical and subclinical hyperthyroidism. European journal of endocrinology. Vol. 163, No. 4, pp: 625-630.
17
Nascimento-Saba, A.; Breitenbach, M.M.D. and Rosenthal, D., 1997. Pituitary-thyroid axis in short-and long-term experimental diabetes mellitus. Brazilian journal of medical and biological research. Vol. 30, pp: 269-274.
18
Neag, M. A.; Mocan, A.; Echeverría, J.; Pop, R. M.; Bocsan, C. I.; Crişan, G. and Buzoianu, A. D., 2018. Berberine: Botanical Occurrence, Traditional Uses, Extraction Methods, and Relevance in Cardiovascular, Metabolic, Hepatic, and Renal Disorders. Frontiers in pharmacology. Vol. 9, pp: 557.
19
Nikolova, T.; Berkov, S. H.; Doycheva, I. V.; Stoyanov, S. and Stanilova, I., 2018. GC/MS based metabolite profiling of five populations of Glaucium flavum (Ranunculales: Papaveraceae) from the Black Sea coast of Bulgaria. acta zoologica bulgarica. Vol. 11, pp: 91-94.
20
Panda, S., 2008. The effect of Anethum graveolens L.(dill) on corticosteroid induced diabetes mellitus: involvement of thyroid hormones. Phytotherapy Research: An International Journal Devoted to Pharmacological and Toxicological Evaluation of Natural Product Derivatives. Vol. 22, No. 12, pp: 1695-1697.
21
Panveloski-Costa, A.C.; Silva Teixeira, S.; Ribeiro, I.M.R.; Serrano-Nascimento, C.; Das Neves, R.X.; Favaro, R.R.; Seelaender M.; Antune, V. and Nunes, M., 2016. Thyroid hormone reduces inflammatory cytokines improving glycaemia control in alloxan-induced diabetic wistar rats. Acta Physiologica. Vol. 217, No. 2, pp: 130-140.
22
Rondeel, J.M.; de Greef, W.J.; Heide, R. and Visser, T.J., 1992. Hypothalamo-hypophysial-thyroid axis in streptozotocin-induced diabetes. Endocrinology. Vol. 130, No. 1, pp: 216-220.
23
Štrbák, V., 2018. Pancreatic Thyrotropin Releasing Hormone and Mechanism of Insulin Secretion. Cellular Physiology and Biochemistry. Vol. 50, No.1, pp: 378-384.
24
Subramoniam, A., 2016. Plants with Anti-Diabetes Mellitus Properties: CRC Press.
25
Yoshida, S.; Kobayashi, Y.; Nakama, T.; Zhou, Y.; Ishikawa, K.; Arita, R.; Miazaki, M.; Sassa, Y. and Oshima, Y., 2015. Increased expression of M-CSF and IL-13 in vitreous of patients with proliferative diabetic retinopathy: implications for M2 macrophage-involving fibrovascular membrane formation. British Journal of Ophthalmology. Vol. 99, No. 5, pp: 629-634.
26
Zoeller, R.T.; Tan, S. and Tyl, R.W., 2007. General background on the hypothalamic-pituitary-thyroid (HPT) axis. Critical reviews in toxicology. Vol. 37, No. 12, pp: 11-53.
27
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر پپتیدهای ضدرگزایی بربیان ژن های Caspase-3 و Caspase-9 در مدل موش Balb/c دارای سرطان پستان القا شده با رده سلولی 4T1
سرطان پستان شایع ترین نوع سرطان در زنان است و ۲۵درصد تمام موارد سرطان را به خود اختصاص میدهد. در همه سرطانها از جمله سرطان پستان مراحل رشد، تهاجم و متاستاز وابسته به عوامل درون سلولی متعددی است که یکی از آنها فرایند رگ زایی (آنژیوژنز) می باشد. هدف از این مطالعه بررسی اثر پپتیدهای ضد رگ زایی طراحی شده بر بیان ژن کاسپاز-3 و کاسپاز-9 در موشهای Balb/c بوده است. در این تحقیق از نمونه بافت آماده موش های Balb/c ماده استفاده گردید که قبلاً به تومور پستان موشی مشتق از رده سلولی 4T1 مبتلا شده بودند(پس از بی هوشی با تزریق درون صفاقی (IP) به مدت 3 تا 5 هفته به پهلوی چپ آنها پیوند زده شده بود). سپس استخراج TOTAL RNA از نمونه های توموری تحت تیمار با پپتیدهای ضد رگ زایی در غلظتهای1 و 10 میکروگرم بر کیلوگرم انجام گردید. سنتز cDNA جهت پایدار کردن مولکول RNA انجام شد. پرایمرها جهت انجام Real time PCR برای هر دو ژن کاسپاز-3 و 9 طراحی و سنتز شد. اختصاصیت اتصال پرایمرها به رشته الگو تایید گردید. سپس تجزیه و تحلیل آماری با نرم افزار SPSS انجام گردید. نتایج حاصل از این مطالعه نشان داد که اختلاف معنی داری بین تیمارهای هر گروه از پپتیدهای ضد رگ زایی (VEGB1,VEGB2,VEGB3) در غلظتهای 1 و 10 میکروگرم بر کیلوگرم و میزان بیان ژن کاسپاز-3و9 وجود دارد (0/05>p). در واقع هر سه پپتید ضد آنژیوژنز می تواند مسیر سیگنالینگ VEGFR را از طریق تنظیم مقادیر کاسپاز-3 و کاسپاز-9 مهار کند و منجر به افزایش آپوپتوز در تومور گردد.
http://www.aejournal.ir/article_101963_c9c938512809af53bd363c897c6de389.pdf
2019-12-22
83
88
رگ زایی تومور
پپتید مهارکننده رگ زایی
کاسپاز-3
کاسپاز-9
ریل تایم
مهسا
رهاننده
mahsa.rahanandeh@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، واحد تنکابن، دانشگاه آزاد اسلامی، تنکابن، ایران
LEAD_AUTHOR
زیور
صالحی
geneticzs@yahoo.co.uk
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه گیلان، رشت، ایران
AUTHOR
سید محسن
اصغری
sm_asghari@guilan.ac.ir
3
گروه بیوشیمی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه گیلان، رشت، ایران
AUTHOR
Bhutia, S.K. and Maiti, T.K., 2008. Targeting tumors with peptides from natural sources Trends 9, caspase-3 and caspase-7 have distinct roles during intrinsic apoptosis in biotechnology. Vol. 26, No. 4, pp: 210-217.
1
Budihardjo, I.; Oliver, H.; Lutter, M.; Luo, X. and Wang, X., 1999. Biochemical pathways of caspase activation during apoptosis. Annu Rev Cell Dev Biol. No. 15 pp: 269-90.
2
Calle, E.E.; Feigelson, H.S.; Hildebrand, J.S.; Teras, L.R.; Thun, M.J. and Rodriguez, C., 2009. Postmenopausal hormone uses and breast cancer associations differ by hormone. Cancer. Vol. 115, No. 7, pp: 15-87.
3
Crawford, Y. and Ferrara, N., 2009. VEGF inhibition: insights from preclinical and clinical studies. Cell and Tissue Research. Vol. 335, No.1, pp: 261-269.
4
Ebos, J.; Lee, C.; Cruz-Munoz, W. and Bjarnason, G., 2009. Accelerated Metastasis after Short-Term Treatment with a Potent Inhibitor of Tumor Angiogenesis. cancer cell. Vol. 15, No. 3, pp: 232-239.
5
Entezarmahdi, R., 2012. Overview of the National Cancer Control Program Breast of the Islamic Republic of Iran (First and second levels prevention). Arvige Publishing Company pp: 46-70.
6
Ferrara, N., 2002. VEGF and the quest for tumor angiogenesis factors. Nature Reviews Cancer. 795 p.
7
Folkman, J., 2010. Angiogenesis an integrative approach from science to medicine. Springer; New York. 601 p.
8
Hanahan, D. and Folkman, J., 1996. Patterns and emerging mechanisms of the angiogenic switch during tumorigenesis. cell. Vol. 86, No. 3, pp: 353-364.
9
Hardwick, J.M. and Soane, L., 2013. Multiple functions of BCL-2 family proteins. Cold Spring Harb Perspect Bio. Vol. 1, No. 2, pp: 5.
10
Harris, H.R.; Tamimi, R.M.; Willett, WC.; Hankinson, S.E. and Michels, K.B., 2011. Body size across the life course, mammographic density, and risk of breast cancer. American j of epidemiology. Vol. 174, No. 8, pp: 909-918.
11
Kilbride, S.M. and Prehn, J.H., 2013. Central roles of apoptotic proteins in mitochondrial function. Oncogene. No. 32, pp: 2703-2711.
12
Kohler,T.;Schill,C.; Deininger,M.W.; Krahl,R.; Borchert,S.; Hasenclever, D.; Leiblein, S.; Wagner, O. and Niederwieser, D., 2002. High Bad and Bax mRNA expression correlate with negative outcome in acute myeloid leukemia (AML). Leukemia. No. 16, pp: 22-29.
13
Linderholm, B.K.; Lindahl, T.; Holmberg, L.; Klaar, S.; Lennerstrand, J.; Henriksson, R. and Bergh, J., 2001. The expression of vascular endothelial growth factor correlates with mutant p53 and poor prognosis in human breast cancer. Cancer Research. Vol. 61, No. 5, pp: 2256-2260.
14
Liu, Y.; Cox, S.R.; Morita, T. and Kourembanas, S., 1995. Hypoxia regulates vascular endothelial growth factor gene expression in endothelial cells. Identification of a 5’enhancer. Circulation research. Vol. 77, No. 3, PP: 638-643.
15
Mylona,E.P.;Alexandrou, A.;Mpakali, I.;Giannopoulou, G.; Liapis, S.; Markaki, A.; Keramopoulos, L. andNakopoulou, D., 2007. Clinicopathological and prognostic significance of vascular endothelial growth factors (VEGF)-C and-D and VEGF receptor 3 in invasive breast carcinoma. European Journal of Surgical Oncology (EJSO). Vol. 33, No.3, pp: 294-300.
16
Oberst, A.; Dillon, C.P.; Weinlich, R.; McCormick, L.L.; Fitzgerald, P.; Pop, C.; Hakem, R.; Salvesen, G.S. and Green, D.R., 2011. Catalytic activity of the caspase-8- FLIP (L) complex inhibits RIPK3-dependent necrosis. Nature. No. 471, pp: 363-367.
17
Okarvi, S.M., 2008. Peptide-based radiopharmaceuticals and cytotoxic conjugates: potential tools against cancer. Cancer Treat. No. 34, pp: 13-26.
18
Osaki, M.; Oshimura, M. and Ito. H., 2004. PI3K-Akt pathway: its functions and alterations in human cancer. Apoptosis. Vol. 9, No. 6, pp: 667-676.
19
Park, H.; Ju, E.; Jo, S.; Jung, U.; Kim, S. and Yee, S., 2009. Enhanced antitumor efficacy of cisplatin in combination with HemoHIM in tumor-bearing mice. BMC Cancer. pp: 9-85.
20
Potente, M.; Gerhardt, H. and Carmeliet, P., 2011. Basic and therapeutic aspects of angiogenesis. Cell. No. 146, pp: 873-887.
21
Sah, N.K.; Khan, Z.; Nelly, M.F.;Pablo, D.M.;Rodriguez, S.S.and Ronell, B.M., 2006. Structural, functional and therapeutic biology of survivin. Cancer letters. Vol. 244, No. 2, pp: 164-171.
22
Saladin, P.M.; Zhang, B.D. and Reichert, J.M., 2009. Current trends in the clinical development of peptide therapeutics. IDrugs. Vol. 12, No. 12, pp:779-784.
23
Salem, L.; ElKholy, S.M. and Al-Atrash, A., 2016. spleen and cancer cells in an experimental mouse model of Ehrlich ascite carcinoma. J of Solid Tumors. Vol. 6, No. 1, pp: 78.
24
Senger, D.; Brown, L.F.; Claffey, K.P. and Dvorak, H.F., 1994. Vascular permeability factor, tumor angiogenesis and stroma generation. Invasion & metastasis.Vol. 14, No .6, pp: 385-394.
25
Shing, Y.; Folkman, J.; Sullivan, R.; Butterfield, C.; Murray, J. and Klagsbrun, M., 1984. Heparin affinity: purification of a tumor-derived capillary endothelial cell growth factor. Science. Vol. 223, No. 4642, pp: 1296-1299.
26
Vecchia, L.C.; Giordano, S.H.;Hortobagyi, G.N. and Chabner, B., 2011. Overweight, obesity, diabetes, and risk of breast cancer: interlocking pieces of the puzzle. The oncologist. Vol. 16, No. 6, pp: 726-729.
27
Vlieghe, P.; Lisowski, V.; Martinez, J. and Khrestchatisky, M., 2010. Synthetic therapeutic peptides.: science and market. Drug discovery today. Vol. 15, No. 2, pp: 40-56.
28
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تاثیرآلوپورینول خوراکی بر ایسکمی رپرفیوژن یک طرفه کلیه چپ در سگ های بی هوش
برقراری مجدد جریان خون در کلیه ایسکمیک موجب آسیب بیشتر به بافت کلیه می شود به نظر می رسد که گزانتین اکسیداز، کاهش غیرقابل برگشت عملکرد میتوکندری، تخلیه انرژی (ATP) و فعال سازی آنزیم های پروتئولیتیک از عوامل تشدید کننده ایسکمی کلیه ها هستند. هدف از مطالعه حاضر بررسی میکروسکوپی آلوپورینول خوراکی بر نارسایی ها و ایسکمی یک طرفه کلیه چپ سگ است. در مطالعه حاضر از 18 قلاده سگ نر بومی استفاده و به طور تصادفی در سه گروه 6 تایی قرار گرفتند. گروه1: به عنوان شاهد، گروه2: ایسکمیک رپرفیوژن، گروه3: ایسکمیک رپرفیوژن با تجویز خوراکی آلوپورینول به میزان 10 میلی گرم به ازای کیلوگرم در روز تا 14 روز متوالی بود. جهت بررسی ایسکمی رپرفیوژن یک طرفه کلیه چپ از مسیر شکمی- میانی استفاده شد سپس نمونه ها از طریق بیوپسی تحت هدایت اولتراسونوگرافی به منظور ارزیابی های میکروسکوپی مورد بررسی قرار گرفتند. نتایج نشان داد که افزایش ضخامت کپسول بومن، آسیب های شدید در سلول های اپیتلیال، بزرگ شدگی فضای لومن و بروز کست های هیالنی، نکروز سلولی و جداشدگی غشای پایه در کورتکس و مدولای خارجی، حضور سلول های التهابی در فضای میان بافتی، هموراژی و فیبروز وجود دارد. بنابراین طبق بررسی آلوپورینول به عنوان مهار کننده گزانتین اکسیداز اثر رضایت بخش محافطتی در آسیب های ناشی از ایسکمیک رپرفیوژن ندارد (0/05<P).
http://www.aejournal.ir/article_101977_28e5958861b0c839dde1efb6b27ea301.pdf
2019-12-22
89
92
آلوپورینول
ایسکمیک رپرفیوژن کلیه
رادیکال آزاد
سگ
محمدامین
شهبازی
amin_vet@gmail.com
1
سازمان جهادکشاورزی استان همدان، همدان، ایران
AUTHOR
نواب
قبادی
navabd21@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه پیام نور، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
Ahmadnia, H.; Kalantary, M.R.; Deluoei, M.K.H. and Imani, M.M., 2007. protective effect of allopurinol and captopiril in warm ischemic reperfusion in dog. Medical Journal of Mashhad. Vol. 49, pp: 357-366.
1
Bird, J.E.; Milhoan, K.; Wilson, C.B.; Young, S.G.; Mundy, C.A.; Parthasarathy, S. and Blantz, R.C., 2005. Ischemic acute renal failure and antioxidant therapy in the rat: The relation between glomerular and tubular Dysfunction. J. Clin. Invest. Vol. 81, pp: 1630-1638.
2
Bonventre, J.V., 1993. Mechanisms of ischemic acute renal failure. Kidney Int,1987. Vol. 43, pp: 1160-1178.
3
Brenner, B.M., 2000. Text book of the kidney 6th edition. Philadelphia: Wb Saunders, Co. pp: 1201-1260.
4
Bulkley, G.B., 1994. Reactive oxygen metabolites and reperfusion injury: aberrant triggering of reticuloendotelial function. Lancet. Vol. 344, pp: 934-935.
5
Bussmann, A.R.; MartonFilho, M.A.; Módolo, M.P.; Módolo, R.P.; Amado, P.; Domingues, M.A. and Castiglia, Y.M., 2014. Effect of allopurinol on the kidney function, histology and injury biomarker (NGAL, IL 18) levels in uninephrectomised rats subjected to ischaemia-reperfusion injury. Acta Cir Bras. Vol. 29, pp: 515-521.
6
Defraigne, J.O.; Pincemail, J.; Detry, O.; Franssen, C.; Meurisse, M. and Limet, R., 1995. Variationsofglutathione and vitamin E concentrations after hypothermic storage in Euro–Collins solution and reperfusion of the rabbit kidney. Transplant; Proc. Vol. 27, pp: 2783-2785.
7
Edelstein, C.L.; Ling, H. and Schrier, R.W., 1997. The nature of renal cell injury. Kidney Int. Vol. 51, pp: 1341-1351.
8
Erdely, A.; Freshour, G. and Baylis, M., 2004. Protection against puromycin aminonucleoside-induced chronic renal disease in the Wistar-Furth rat. Am. J. Physiol. Renal Physiol. Vol. 287, pp: 81-89.
9
Greene, E. and Paller, M.S., 1992. Xanthine oxidase produces O2- in post hypoxic injury of renal epithelial Cells. Am. J. Physiol. Vol. 263, pp: 251-255.
10
Guarnieri, C.; Flamigini, F. and Caldarera, C.M., 1980. Role of oxygen in the cellular damage induced by re-oxygenation of hypoxic heart. J. Mol. Cell Cardiol. Vol. 12, pp: 797-808.
11
Kumar, A. and Fausto, M.B., 2007. Robbins pathology 8th edition andishe rafie press. pp: 10-52.
12
Liebertal, W., 1977. Biology of acute renal failure. Therapeutic implications. kidney. Int. Vol. 52,
13
pp: 1102-1115.
14
Paller, M.S., 1998. Renal work, glutathione and susceptibility to free radical-mediated post-ischemic injury. Kidney Int. Vol. 33, pp: 843-849.
15
Rhoden, E., 2002. Protective effect of allopurinol in the renal ischemia reperfusion in uninephrectomized rats. General pharmacology. Vol. 35, pp: 189-193.
16
Shaffer, J.B.; Sutton, R.B. and Bewley, G.C., 1987. Isolation of a cDNA clone for murine catalase and analysis of an acatalasemic mutant. J. Biol. Chem. Vol. 262, pp: 12908-12911.
17
Stein, H.J.; Hinder, R.A. and Oashuizen, M.M.J., 1990. Gastric mucosal injury caused by hemorrhagic shock and reperfusian Surgery. Vol. 108, pp: 467-474.
18
Sunami, R., 2004. Acatalasemia sensitizes renal tubular epithelial cells to apoptosis and exacerbates renal fibrosis after unilateral ureteral obstruction. Am. J. Physiol. Renal. Physiol. Vol. 286, pp: 1030-1038.
19
Zager, R.A. and Gmur, D.J., 1989. Effects of Xanthine oxidase inhibition on ischemic acute renal failure. Acta J. Physiol. Vol. 257, pp: 953-958.
20
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تنوع گونهای پرندگان آبزی و کنارآبزی زمستان گذران در دریاچه چغاخور در استان چهارمحال و بختیاری
به منظور بررسی روند تغییر شاخص های تنوع گونهای پرندگان آبزی و کنارآبزی زمستان گذران در دریاچه چغاخور، دادههای سرشماری نیمه زمستانه انجام گرفته توسط اداره کل حفاظت محیط زیست استان چهارمحال و بختیاری در سالهای 1373، 1378، 1383، 1388 و 1393 مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت. شاخصهای تنوع شانون-وینر، سیمپسون، غنای گونهای مارگالف و یکنواختی سیمپسون در سالهای مورد مطالعه برای گونههای آبزی و کنارآبزی در دریاچه چغاخور محاسبه گردید. بیش ترین و کم ترین مقدار شاخص تنوع شانون به ترتیب در سال 1378 (4/61) و 1388 (4/39) مشخص گردید. ازنظر شاخص تنوع سیمپسون بیش ترین مقدار در سالهای 1373، 1378 و 1383 (0/96) و کم ترین مقدار 1388 و 1393 (0/95) تعیین گردید. ازنظر غنای گونهای مارگالف بیش ترین و کم ترین غنای گونهای به ترتیب سال 2005 (2/86) و 2015 (2/23) مشخص گردید. از نظر شاخص یکنواختی سیمپسون بیش ترین و کم ترین یکنواختی در دریاچه چغاخور به ترتیب سال های 1995 و 2005 (0/89) و سال 2010 (0/86) تعیین گردید. تعداد گونههای آبزی نسبت به گونههای کنارآبزی بیش تر بود. هم چنین فراوانی پرندگان آبزی نسبت به کنارآبزی نیز بیش تر بود.
http://www.aejournal.ir/article_102003_9184fb0968d88458d2e8f9c4c5f7b554.pdf
2019-12-22
93
100
دریاچه چغاخور
پرندگان مهاجر
فراوانی
غنای گونه ای
تنوع گونه ای
ابراهیم
گلزار
igolzar@yahoo.com
1
گروه علوم محیطزیست، دانشکده منابع طبیعی و محیطزیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
بهمن
شمس اسفندآباد
b-shams@arak.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
LEAD_AUTHOR
جعفر
مرشدی
jafarmorshedi@gmail.com
3
دانشکده فنی و مهندسی، واحد شوشتر، دانشگاه آزاد اسلامی، شوشتر، ایران
AUTHOR
مرتضی
نادری
mnaderi@ku.edu.tr
4
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه اراک، اراک، ایران
AUTHOR
سید علی
جوزی
sajozi@yahoo.com
5
گروه محیط زیست، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
بهروزی راد، ب.، 1387. تالابهای ایران، انتشارات سازمان جغرافیایی نیروهای مسلح، تهران.
1
بهروزی راد، ب.؛ راسخ، ع.؛ اشراقیان، ن.؛ مولا، ع. و امینی، ا.، 1390. بررسی روند تغییرات ماهانه تنوع و تراکم و جمعیت پرندگان آبزی تالاب هورالعظیم. مجله علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 13، شماره 3، صفحات 87 تا 96.
2
بهروزی راد، ب.؛ ریاحی بختیاری، ع. و خالقی زاده رستمی، ا.، 1381. بررسی تغییرات ماهانه تنوع و تراکم پرندگان آبزی و کنار آبزی به منظور مدیریت تالابهای بین المللی سلکه و سیاه کشیم (کلاس اسپند)، مجله محیط شناسی. شماره 33، صفحات 21 تا 29.
3
خلیلی پور، ا. و بهروزی راد، ب.، 1386. بررسی تغییرات تنوع و فراوانی پرندگان آبزی و کنار آبزی زمستان گذران در کل تالابهای حاشیه جنوبی خزر. فصلنامه محیط زیست. شماره 44، صفحات 20 تا 26.
4
دانیالی، ر. و حجه فروش نیا، ش.، 1388. تأثیر احداث سد بر تالاب بین المللی چغاخور، اولین کنفرانس بین المللی مدیریت منابع آب، شاهرود، دانشگاه صنعتی شاهرود، https://www.civilica.com /Paper-ICWR01-ICWR01_081.html
5
طبیعی، ا.، 1392. بررسی تنوع گونه ای پرندگان آبزی و کنارآبچر مهاجر زمستان گذران پارک ملی دریایی نای بند در استان بوشهر. فصلنامه زیست شناسی جانوری. سال 6، شماره 2، صفحات 37 تا 46.
6
طبیعی، ا. و راستی، ع.، 1390. بررسی تنوع زیستی پرندگان آبزی و کنارآبچر زمستان گذران خورخاکی استان هرمزگان. فصلنامه تالاب. دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 2، شماره 7، صفحات 55 تا 64.
7
طبیعی، ا.؛ جعفری نژاد بسطامی، م. و جولایی، ل.، 1393. بررسی تنوع گونه ای پرندگان آبزی و کنارآبچر مهاجر زمستان گذران در تالاب مهارلو در استان فارس. فصلنامه زیست شناسی جانوری. سال 6، شماره 4، صفحات 17 تا 24.
8
عاشوری، ع. و وارسته مرادی، ح.، 1393. بررسی تنوع گونه ای پرندگان آبزی و کنار آبزی مهاجر زمستان گذران در تالاب بینالمللی انزلی، فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 6، شماره 20، صفحات 55 تا 56.
9
فتح اللهی، م.؛ حیدری، ز.؛ صفایی، م.؛ شریفی نیا، ر. و آتشخوار، ف.، 1394. برنامه مدیریت جامع تالاب چغاخور به همراه مطالعات شناخت. گزارش طرح مطالعاتی. اداره کل حفاظت محیط زیست استان چهارمحال و بختیاری، شهرکرد. 81 صفحه.
10
قاسمی، م. و قاسمی، ص.، 1395. بررسی درصد فراوانی و تنوع زیستی پرندگان زمستان گذران در مناطق تالابی شرق استان هرمزگان. فصلنامه محیطزیست جانوری. سال 9، شماره 3، صفحات 33 تا 48.
11
گلزار، ا.، 1397. بررسی ارتباط عوامل محیطی و انسانی با تنوع گونهای پرندگان آبزی تالابها (مطالعه موردی: تالاب های شادگان، چغاخور و پریشان). رساله دکتری محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات. 172 صفحه.
12
گلشاهی، ا.؛ همامی، م. و خلیلی پور، ا.، 1388. بررسی تنوع گونهای پرندگان آبزی و کنارآبزی زمستان گذران در تالابهای آلاگل، آلماگل، آجیگل و گمیشان. مجله علمی تخصصی تالاب. دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 1، شماره 1، صفحات 87 تا 98.
13
مشکین، ا.؛ بهروزی راد، ب.؛ صفاریان، ش. و کریم پور دشت بزرگ، ا.، 1393. بررسی تنوع و تراکم پرندگان آبزی و کنارآبزی به منظور مدیریت تالاب صنایع فولاد بهعنوان زیستگاه پرندگان. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 6، شماره 2، صفحات 91 تا 102.
14
مصداقی، م.، 1378. بررسی غنای گونهای و فرمهای رویشی تحت سطوح سه گانه بهره برداری در مراتع شرق استان گلستان. مجله علمی پژوهشی کشاورزی و منابع طبیعی. شماره 8، صفحات 55 تا 62.
15
Atmar, W. and Patterson, B.D., 1993. The measure of order and disorder in the distribution of species in fragmented habitat. Oecologia. Vol. 96, No. 3, pp: 373-382.
16
Baldi, A. and Kisbenedek, T., 1999. Species-specific distribution of reed-nesting passerine birds across reed-bed edges: effects of spatial scale and edge type. Acta Zoologica Academiae Scientiarum Hungaricae. Vol. 45, No. 2, pp: 97-114.
17
Bambang, D.H., 2008. Jakarta birding: surabaya mangrove. Retrieved 16, November, 2009, from http://jakartabirding. blogspot.com/2008/08/surabaya-mangrove.html.
18
Bayly, N.J. and Gomez, C., 2008. Bird communities in black mangrove and other mangrove types – with particular reference to Neotropical migratory birds, Final report of evaluating a stepping stone for Neotropical migratory birds the Belizean NE biological corridor: Belizean Forestry Department, Belmopan, Belize.
19
Casado, S. and Montes, C., 1995. Guía de los lagos y humedales de España. Madrid. 225 p.
20
Colwell, M.A. and Dodd, S.L., 1995. Waterbird communities and habitat relationships in coastal pastures of northern California. Conservation Biology. Vol. 9, No. 4, pp: 827-834.
21
Elmberg, J.; Nummi, P.; Poysa, H. and Sjoberg, K., 1994. Relationships between species number, lake size and resource diversity in assemblages of breeding waterfowl. Journal of Biogeography. pp: 75-84.
22
Fasola, M. and Canova, L., 1991. Colony site selection by eight species of gulls and terns breeding in the Valli di Comacchio (Italy). Italian Journal of Zoology. Vol. 58, No. 3, pp: 261-266.
23
Getzner, M., 2002. Investigating public decisions about protecting wetlands. Journal of Environmental Management. Vol. 64, No. 3, pp: 237-246.
24
Gibbs, J.P., 1993. Importance of small wetlands for the persistence of local populations of wetland-associated animals. Wetlands. Vol. 13, No. 1, pp: 25-31.
25
González-Gajardo, A.; Sepúlveda, P.V. and Schlatter, R., 2009. Waterbird assemblages and habitat characteristics in wetlands: influence of temporal variability on species-habitat relationships. Waterbirds. pp: 225-233.
26
Green, A.J., 1996. Analyses of globally threatened Anatidae in relation to threats, distribution, migration patterns, and habitat use. Conservation Biology. Vol. 10, No. 5, pp: 1435-1445.
27
Hattori, A. and Mae, S., 2001. Habitat use and diversity of waterbirds in a coastal lagoon around Lake Biwa, Japan. Ecological Research. Vol. 16, No. 3, pp: 543-553.
28
Herremans, M., 1999. Waterbird diversity, densities, communities and seasonality in the Kalahari Basin, Botswana. Journal of arid environments. Vol. 43, No. 3, pp: 319-350.
29
Kim, J.H., 2003. Wintering Waterbird Monitoring in the Republic of Korea. First Meeting of AWC Coordinators, 9-10 October 2003, Waterbird Monitoring in South Korea DOC 13.
30
Jobson, J.D., 1992. Applied Multivariate Data Analysis. Volume II: Categorical and Multivariate Methods. Springer Verlag, New York.
31
Kumar, J.N.; Soni, H. and Kumar, R.N., 2007. Patterns of seasonal abundance and diversity in the waterbird community of Nal Lake Bird Sanctuary, Gujarat, India. Bird Populations. Vol. 8, pp: 1-20.
32
Mehrjoo, A., 1992. The study of diversity, density and distribution of migratory birds in the Gomishan wetland. Master thesis. Department of Natural Resources, Tehran University. (In Persian).
33
Mori, Y.; Sodhi, N.S.; Kawanishi, S. and Yamagishi, S., 2001. The effect of human disturbance and flock composition on the flight distances of waterfowl species. Journal of Ethology. Vol. 19, No. 2, pp: 115-119.
34
Paracuellos, M. and Tellería, J.L., 2004. Factors affecting the distribution of a waterbird community: the role of habitat configuration and bird abundance. Waterbirds. Vol. 27, No. 4, pp: 446-453.
35
Petrie, S.A., 1997. Nutrient reserve dynamics, foraging strategies, molt patterns and movements of White-faced Whistling Ducks in South Africa.
36
Quan, R.C.; Wen, X. and Yang, X., 2002. Effects of human activities on migratory waterbirds at Lashihai Lake, China. Biological Conservation. Vol. 108, No. 3, pp: 273-279.
37
Ratti, J.T.; Rocklage, A.M.; Giudice, J.H.; Garton, E.O. and Golner, D.P., 2001. Comparison of avian communities on restored and natural wetlands in North and South Dakota. The Journal of Wildlife Management. pp: 676-684.
38
Sokal, R.R. and Rohlf, F.J., 1981. Biometry.'(W. H. Freeman and Co.: San Francisco.). Biometry. 2nd ed. WH Freeman and Co., San Francisco, CA.
39
Torres, R., 1995. Waterfowl community structure of laguna Santo Domingo (Cordoba) during and annual cycle. Revista de la Asociacion de Ciencias Naturales del Litoral. Rev. Asoc. Cienc. Nat. Litor. St. Tome. Vol. 26, No. 1, pp: 33-40.
40
Sonal, D.; Jagruti, R. and Geeta, P., 2010. Avifaunal diversity and water quality analysis of an inland wetland. Journal of Wetlands Ecology. Vol. 4, pp: 1-32.
41
Whittaker, R.H. and Likens, G.E., 1973. Primary production: the biosphere and man. Human Ecology. Vol. 1, No. 4, pp: 357-369.
42
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی شاخص های دینامیک و سطوح غذایی ماهی گوازیم دم رشته ای Nemipterus japonicus Bloch, 1791 در آب های شمال دریای عمان
عادات غذایی ماهی گوازیم دم رشته ای (Nemipterus japonicus)، در دوره زمانی 97-1396، به صورت فصلی در دریای عمان مورد بررسی قرار گرفت. در این تحقیق محتویات معده 210 عدد ماهی گوازیم دم رشته ای (91 عدد ماده و 119 عدد نر) مورد بررسی قرار گرفت. در این مطالعه برخی از شاخص ها مانند شاخص شدت تغذیه (2/60 درصد)، شاخص خالی بودن معده (43/80 درصد)، میانگین سطح غذایی (4/08) و نرخ غذای مصرفی (9/00 در سال) محاسبه گردید. در مجموع 4 رده تاکسونومیک عمده در محتویات معده اینگونه شناسایی و وزن شد. گروه های شناسایی شده شامل بندپایان (سخت پوستان)، سرپایان، ماهیان استخوانی و جلبک های دریایی بودند. بندپایان با 55/75 درصد فراوان ترین اقلام غذایی یافت شده در معده گوازیم دم رشته ای بود. نتایج شاخص حضور شکار نشانداد که خرچنگ های خانواده Portunidae (درصد 61/19) به عنوان غذای اصلی،عقربک Squilla mantis (درصد 28/35) و ماهیان استخوانی هضم شده (20/89 درصد)به ترتیب به عنوانغذای فرعی و اتفاقی تقسیم بندی شدند بیش ترین میزان شدت تغذیه در زمستان (50/77 درصد) و کم ترین آن در پاییز (35/20 درصد) به دست آمد. ماهی گوازیم دم رشته ای، علاوه بر گوشت خوار بودن دارای رفتار تغذیه ای هم نوع خواری هم می باشد که در فصل زمستان (3/00 درصد) و فصل بهار (6/00 درصد) مشاهده گردید. نتایج تحقیق حاضر بر مبنایشاخص درصد حضور شکار به گوشت خوار بودن و براساس شاخص شدت تغذیه به متوسط بودن نرخ غذای مصرفی برای ماهی گوازیم دم رشته ای دلالت می نماید.
http://www.aejournal.ir/article_102013_195f1973f2529ba2dff1dbbefd08870f.pdf
2019-12-22
101
110
ماهی گوازیم دم رشته ای (Nemipterus japonicus)
سطح غذایی
نرخ غذای مصرفی
هم نوع خواری
شمال دریای عمان
مونا
تاج زاده نمین
monatajzadeh@gmail.com
1
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
تورج
ولی نسب
t_valinassab@yahoo.com
2
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
احسان
رمضانی فرد
eramezanifard@gmail.com
3
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
فریبرز
احتشامی
ehteshamei@yahoo.com
4
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، م.؛ محبی نوذر، ل.؛ سراجی، ف.؛ اسلامی، ف.؛ اجلالی، ک.؛ سلیمی زاده، م. و آقاجری، ن.، 1392. بررسی هیدرولوژی و هیدروبیولوژی خلیج فارس و دریای عمان. موسسه تحقیقات شیلات ایران. پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان. 119صفحه.
1
اسدی، ه. و دهقانی، ر.، 1375. اطلس ماهیان خلیج فارس و دریای عمان. سازمان تحقیقات و آموزش شیلات ایران. 226 صفحه.
2
آمارنامه صید شیلات ایران. 1393. سازمان شیلات ایران.
3
تقوی مطلق، س.ا.؛ ولی نسب، ت.؛ وهاب نژاد، ا.؛ حکیم الهی، م.؛ اسکندری، غ.؛ اسماعیلی، ع.؛ قاسمی، ش.؛ نوری نژاد، م.؛ میاحی، ی.؛ علوی، ع.؛ عرفی پور، م.؛ قاسمی، ص.؛ درویشی، م.؛ سالارپوری، ع.؛ طالب زاده، س.ع.؛ خداددای، ر.؛ مبرزی، ع.؛ بیات، ی. و آلبوعبید، ع.، 1394. تعیین روابط اکولوژیک گونه های اقتصادی ماهیان در آب های خلیج فارس (خوزستان، بوشهر و هرمزگان). گزارش نهایی پروژه ملی. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 131 صفحه.
4
خورشیدی، ص.، 1386. گزارش آمار صید سال 1385 استان هرمزگان. اداره کل شیلات استان هرمزگان. 80 صفحه.
5
راستگو، ع.ر.؛ ولی نسب، ت. و طاولی، م.، 1393. تخمین سطح غذایی در گونه های مختلف آبزیان با تأکید بر نرم افزار TrophLab خلیج فارس و دریای عمان. مجله شیلات و آبزیان. سال 5، شماره 19، صفحات 43 تا 56.
6
رضایی، ص.؛ پیغمبری، س.ی.؛ رئیسی، ه. و شعبانی، م.ج.، 1393. پویایی شناسی جمعیت ماهی گوازیم دم رشته ای (Nemipterus Japonicus) در آب های خلیج فارس، استان بوشهر. مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 3، شماره 4، صفحات 68 تا 75.
7
رضایی، ص.؛ پیغمبری، س.ی.؛ رئیسی، ه. و شعبانی، م.ج.، 1393. تعیین رژیم غذایی ماهی گوازیم دم رشته ای (Nemipterus japonicaus) در آب های خلیج فارس، استان بوشهر. مجله تغذیه و بیوشیمی آبزیان. سال 1، شماره 2، صفحات 23 تا 33.
8
صادق پناهی، ز.؛ پذیرا، ع. و خدادادی، م.، 1391. بررسی و مقایسه خصوصیات ریخت سنجی و شمارشی ماهی گوازیم دم رشته ای (Nemipterus japonicus) در سواحل جزیره خارک و بوشهر. مجله آبزیان و شیلات. دوره 9، شماره 3، صفحات 53 تا 69.
9
صادقی، ن.، 1390. ویژگی های زیستی و ریخت شناسی ماهیان جنوب ایران (خلیج فارس و دریای عمان). انتشارات نقش مهر. 439 صفحه.
10
فاضلی، ف.، 1385. بررسی زیست شناسی تولید مثل ماهی گوازیم دم رشته ای در سواحل استان خوزستان. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر. 260 صفحه.
11
قطبالدین، ن.، 1390. بررسی و تنوع پراکنش خرچنگ های نواحی جزر و مدی و زیر جزر و مدی سواحل استان سیستان و بلوچستان (دریای عمان). پایان نامه دکترای تخصصی. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران. 337 صفحه.
12
کردگاری، م.، 1388. تعیین خصوصیات زیستی و پارامترهای پویایی جمعیت ماهی سلطان ابراهیم، گوازیم دم رشته ای (Nemipterus japonicus) در آب های ساحلی استان بوشهر خلیج فارس. پایان نامه دکترای تخصصی. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران. 116 صفحه.
13
کشاورز میرزا محمدی، م.؛ وثوقی، ع.ر. و مخیر، ب، 1390. بررسی رژیم غذایی ماهی گوازیم دم رشته ای گونهNemipterus japonicus در آب های خلیج فارس (سواحل استان هرمزگان). مجله بیولوژی دریا. سال 3، شماره 9، صفحات 3 تا 11.
14
سالارپوری، ع.؛ بهزادی، س.؛ درویشی، م، و کمالی، ع.، 1389. تعیین همآوری گوازیم دم رشته ای (Nemipterus japonicus)در خلیج فارس، منطقه جزیره تنب تا هنگام. مجله آبزیان و شیلات. جلد 1، شماره 2، صفحات 43 تا 48.
15
محمود زاده، ا.، 1394. تعیین الگوی تنوع و پراکنش مکانی و زمانی ماهیان بسترزی دریای عمان (محدوده استان سیستان و بلوچستان). پایان نامه دکترای تخصصی. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران. 118 صفحه.
16
میرآخورلی، ط.، 1383. بررسی بیولوژی تغذیه ماهی سلطان ابرهیم (Nemipterus japonicus) در آب های بوشهر. پایان نامه دوره کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال. 43 صفحه.
17
ولی نسب، ت.، 1378. بررسی تنوع جمعیتی ماهی مرکب در آب های خلیج فارس و دریای عمان، پایان نامه دوره دکترای تخصصی. پایان نامه دکترای تخصصی. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران. 165 صفحه.
18
ولی نسب،ت.؛ افشاری،م. و سیف آبادی، س.ج.، 1389. بیولوژی تغذیه ماهی گوازیم دم رشته ای (Nemipterus japonicus) مجله علوم و فنون دریایی. دوره 10 صفحات 13 تا 23.
19
ولی نسب، ت.؛ آژیر، م.ت.؛ دهقانی، ر.؛ مبرزی، ع.؛ هاشمی، س.ا. و دریانبرد، غ.، 1392. تعیین میزان توده زنده کفزیان خلیج فارس و دریای عمان به روش مساحت جاروب شده. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 384 صفحه.
20
ولی نسب، ت. و نوروزی، ح.، 1386. برآورد ذخایر و تعیین پراکنش گوازیم دم رشته ای و گیش خال سفید و گیش چانه دار در آب های خلیج فارس، محدوده استان هرمزگان. فصلنامه پژوهش و سازندگی. شماره 76، صفحات 117 تا 125.
21
Acharya, P.; Jaiswar, A.K.; Palaniswamg, R. and Gulati, D.K., 1994. A study of food and feeding habits of Nemipterus japonicas (Bloch, 1791) of Bombay coast Indian Journal of Fisheries. Vol. 24, pp: 73- 80.
22
Akhtar, Y., 2008. Feeding habitat and nematode parasites of some fishes of Karachi coast. PhD thesis, Jinnah University for women Karachi. 252 p.
23
Ammundsen, P.A.; Gabler, H.M. and Staldvik, F.G., 1996. A new approach to graphical analysis of feeding strategy from stomach content data modification of the Costello method. Journal of Fish Biology. Vol. 48, pp: 607-614.
24
Babbitt, K.J. and Meshaka, W.E., 2000. Benefits of eating conspecifics: effects of background diet on survival and metamorphosis in the Cuban tree frog (Osteopilus septentrionalis). Copeia. pp: 469-474.
25
Bakhsh, A.A., 1994. The biology of thread bream, Nemipterus japonicus (Bloch) from the Jizan Region of the Red Sea. J. King Abdul-Aziz Uni. Vol. 7, pp: 179-189.
26
Berg, J., 1979. Discussion of methods of investigating the food of fishes, with reference to a preliminary study of the prey of Gobiusculus flavescens. Mar. Biol. Vol. 50, pp: 263-273.
27
Biswas, S.P., 1993. Manual of Methods in Fish Biology. 1st Eden, South Asian Publishers Pvt. Ltd., New Delhi. ISBN: 1-881318-18-4, 1157 p.
28
Carpenter, E.K.; Krupp, F.; Jones, D.A. and Zajonz, U., 1997. The Living Marine Resources of Kuwait, Eastern Saudi Arabia, Bahrain, Qatar and the United Arab Emirates. FAO Species Identification Field Guide for Fishery Purpose, Food and Agriculture Organization of the United Nation, Rome, Italy. ISBN: 9251037418, 239 p.
29
Christensen, V.; Walters, C.J. and Pauly, D., 2000. Ecopath with Ecosim: A user’s guide. Fisheries Center. University of British Columbia, Vancouver and ICLARM, Malaysia. 130 p.
30
Gulati, D.K.; Steinarsson, B.A. and Stefansson, G., 2007. Analysis of survey data of (Nemipterus Japonicus) found along the west coast of India. The United Nations University, Fisheries Training Programme. 40 p.
31
Hammar, J., 2000. Cannibals and parasites: Conflicting regulators of bimodality in high latitude Arctic charr Salvelinus alpinus. Oikos. Vol. 88, pp: 33-47.
32
Hyslop, E.J., 1980. Stomach contents analysis- A review of methods and their application, Journal of Fish Biology. Vol. 17, pp: 411-429.
33
Jereb, P. and Roper, C.F.E., 2005. Cephalopods of the world. An Annotated and Illustrated catalogue of Cephalopod species known to date. Vol. 1. Chambered nautiluses and sepioids (Nautilidae, Sepiidae, Sepiolidae, Sepiadariidae, Idiosepiidae and Spirulidae). FAO Spec. Cat. Fish. Purp. Rome: FAO. Vol. 4, No. 1, 262 p.
34
Ke, D.S.; Guan, Z.B.; Yu, H.S.; Wu, S.W., Han, L.M. and Jiang, Y.J., 2007. Environmental pollution and study trend in Pearl River Estuary. Marine Environmental Science. Vol. 26, No. 5, pp: 488 -491 (in Chinese, with English abstract).
35
Kerdgari, M.; Valinassab, T.; Jamili, S.; Fatemi, M.R. and Kaymaram, F., 2009. Reproductive biology of the Japanese threadfin bream, in the Northern of Persian Gulf. Journal of Fisheries Aquatic Science. Vol. 4. pp: 143-149.
36
King, M., 1995. Fisheries Biology, Assessment and Management. Fishing News Book. 342 p.
37
Krishnamoorthi, B., 1971. Biology of the threadfin bream Nemipterus japonicus (Bloch). Ind. J. Fish. Vol. 18, pp: 1-21.
38
Kumar, S. and Tembhre, M., 1996. Anatomy and Physiology of Fishes. Vikas Publishing. 275 p.
39
Kuthalingam, M.D.K., 1965. Notes on some aspects of the fishery and biology of Nemipterus japonicus with special reference to feeding behavior. Ind. J Fish. Vol. 12, pp: 500-506.
40
Manojkumar, P.P., 2004. Some aspects on the biology of Nemipterus japonicus (Bloch) from Veraval in Gujarat. Ind. J. Fish. Vol. 51, pp: 185-191.
41
Monjezi Veysi, M.; Mahboobi Soofiani, N.; Valinassab, T. and Daryanabard, G.R., 2017. Determination of CPUA and distribution pattern of families Haemulidae, Nemipteridae and Ariidae in the Oman Sea. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 16, No. 4, pp: 1297-1311.
42
Nair, K.V.S.; Reghu, R.; Balachandran, K.; Menon, N.G.; Chakraborty, S.K.; Zachariah, P.U.; Vivekanadan, E.; Mohanaraj, G.; Rengaswamy, V.S. and Raje, S.G., 1996. Threadfin breams and Lizardfish resources in the shelf waters of Indian EEZ. New Delhi India Department. pp: 363-374.
43
Palomares, M.L.D. and Pauly, D., 1999. A multiple regression model for predicting the food consumption of marine fish populations. Marine and Freshwater Research. Vol. 40, No. 3, pp: 259-273.
44
Pauly D., 1983. Some simple methods for the assessment of tropical fish stocks. FAO Fish. Technical Paper. No. 234, 52 p.
45
Pauly, D. and Christensen, V., 2000. Trophic Levels of Fishes. In: (Froese, R. and Pauly, D., eds.). Fish Base: Concepts, Design and Data Sources. Manila, Philippines: ICLAR. 181 p.
46
Pauly, D.; Christensen, V.; Dalsgaard, J.; Froese, R. and Torres, F., 1998. Fishing down marine Webs. Journal Science, new series. Vol. 279, No. 5352, pp: 860-863.
47
Raje, S.G., 2002. Observations on the biology of Nemipterus japonicus from Veraval. Ind. J. Fish. Vol. 49, pp: 433-440.
48
Randal, J.E., 1995. The complete divers and fishermans guide to coastal fishes of Oman. University of Hawaii press. 439 p.
49
Russell, B.C., 1990. FAO species catalogue. Nemipteridae Fishes of the World. (Threadfin breams, Whiptail breams, Monocle breams, Dwarf monocle breams, and Coral breams). FAO Fisheries Synopsis. No. 125, Volume 12. Rome.149 p.
50
Smith, M.M. and Heemstra, P.C., 1986. Smith's sea fishes springer velage, New York. 1047 p.
51
Sparre P. and Venema S.C., 1998. Introduction to tropical fish stock assessment. Part 1. FAO Fisheries Technical Paper No. 306.1, Rome, Italy. 450 p.
52
Taghavi Motlagh, S.A.; Vahabnezhad, A.; Shabani, M.J., Nazari, M.A. and Hakimelahi, M., 2012. Studies on the Reproductive Biology of the Female Saurida tumbil in the Persian Gulf (Bushehr Province, Iran), World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 4, No. 4, pp: 400-406.
53
Vinci, G.K., 1982. Threadfin bream (Nemipterus japonicus) resources along the Kerala coast with notes on the biology of Nemipterus japonicus. Indian J. Fish Biol. Vol. 29, pp: 37-49.
54
http://www.fishbase.org/summary/4559.
55
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی فلزات سنگین (سرب و کادمیوم) در بافت های عضله و کبد سنگسر معمولی (Pomadasys kaakan)، آب های جزیره هرمز، خلیج فارس
این تحقیق با هدف تعیین میزان غلظت فلزات سنگین سرب و کادمیوم در بافت های عضله و کبد ماهی سنگسرمعمولی(Pomadasys kaakan) در آب های جزیره هرمز در سال 1396 انجام پذیرفت. تعداد 16 عدد ماهی سنگسر معمولی صید و به آزمایشگاه منتقل گردید. بعد از زیست سنجی نمونه ها، بافت عضله و کبد جداسازی و هضم شیمیایی انجام شد و با استفاده از دستگاه جذب اتمی مجهز به کوره گرافیتی (varian) میزان غلظت فلز سرب و کادمیوم در بافت ها با دو تکرار اندازه گیری گردید. براساس نتایج به دست آمده میانگین غلظت سرب در بافت عضله و کبد ماهی سنگسر معمولی به ترتیب 0/141 و 0/399 میلی گرم در کیلوگرم وزن خشک محاسبه شد. هم چنین براساس نتایج به دست آمده میانگین غلظت کادمیوم در بافت عضله و کبد ماهی سنگسر معمولی به ترتیب 0/055 و 0/222 میلی گرم در کیلوگرم وزن خشک محاسبه شد. نتایج این مطالعه نشان داد که غلظت فلزات سنگین سرب و کادمیوم در بافت عضله ماهی سنگسر معمولی در منطقه مورد مطالعه پایین تر از حد مجاز استانداردهای سازمان بهداشت جهانی، سازمان غذا و کشاورزی، مرکز ملی بهداشت و پزشکی استرالیا، وزارت کشاورزی شیلات و غذای انگلستان و سازمان غذا و داروی آمریکا بود. بنابراین استفاده از این گونه برای مصارف انسانی مشکلی را از دیدگاه سلامت و بهداشت عمومی ایجاد نخواهد کرد.
http://www.aejournal.ir/article_102015_3c01a746dac1762ccd64f33b2bdcd32d.pdf
2019-12-22
111
116
سنگسر معمولی
سرب
کادمیوم
جزیره هرمز
خلیج فارس
یاسمین
عمادی خراجی
yasaminemadi0@gmail.com
1
گروه بوم شناسی آبزیان شیلاتی، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
شادی
خاتمی
shadi.khatami1@gmail.com
2
گروه بیولوژی دریا، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
مهناز
کردگاری
m_kerdgar@yahoo.com
3
گروه بیولوژی دریا، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
بختیاری، م.، 1380. راهنمای مفصل ایران، استان هرمزگان. موسسه جغرافیایی و کارتوگرافی گیتاشناسی. 240 صفحه.
1
جلالی، ک.؛ ابطحی، ب. و سمیعی، ک.، 1394. ارزیابی میزان کادمیوم در بافت های کبد و عضله ماهی زمین کن دم نواری در رسوبات خور موسی ( شمال غرب خلیج فارس). مجله علوم و فنون دریایی. شماره 2، صفحات 1 تا 10.
2
دهقانی، م. و فرزین، م.، 1394. بررسی و تعیین میزان غلظت فلزات سنگین (سرب، مس، نیکل و کادمیوم) در بافت ماهی هوور (Longtail tuna) صید شده در آب های ساحلی جزیره قشم. مجله آبزیان و شیلات. سال 6، شماره 23، صفحات 25 تا 34.
3
سعیدپور، ب.؛ نبوی، س.م.ب.؛ مرتضوی، ص. و خشنود، ر.، 1386. مقایسه غلظت فلزات سرب و کادمیوم در بافت ماهیجه دو گونه کفشک ماهیان سواحل استان هرمزگان. مجله علوم و فنون دریایی. سال 2، شماره 4، صفحات 61 تا 71.
4
صادقی، م.؛ ابدالی، س.؛ دقوقی، ب.؛ مورکی، ن. و بهره مند، ب.، 1390. بررسی تجمع برخی فلزات سنگین (سرب، کادمیوم و نیکل) در بافت های کبد و عضله ماهی حلوا سیاه (Parastromateus niger) در آب های استان هرمزگان (بندرعباس). مجله زیست شناسی دریا. دوره 10، شماره 3، صفحات 23 تا 28.
5
عسکری ساری، ا.؛ جواهری بابلی، م.؛ محجوب، ث. و ولایت زاده، م.، 1391. میزان فلزات سنگین (سرب، کادمیوم و جیوه) در عضله ماهی شوریده در بنادر صیادی آبادان و بندرعباس. مجله علمی شیلات. سال21، شماره 4، صفحات 99 تا 106.
6
غلام دخت بندری، م.؛ رضایی، پ؛ قربانی، م. و کمانگر، م.، 1395. پایش ژئوشیمیایی و زمین زیست محیطی عناصر اصلی و فرعی در رسوبات ساحلی جزیره هرمز (خلیج فارس) و ترسیم نقشه های هم پراکنش. مجله محیط زیست و مهندسی آب. دوره 2، شماره 3، صفحات 267 تا 283.
7
مهین، م.؛ باقری، ا.؛ خاتمی، ش. و پریشانی حیدرپور، ل.، 1396. بررسی احتمال آلودگی به فلزات سنگین (Pb, Cd) در برخی از ماهیان وابسته به بستر و رسوبات موجود در غرب شهر بندرعباس حد فاصل اسکله شهید رجایی. گزارش طرح پژوهشی دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس. 39 صفحه.
8
Askary sary, A. and Velayatzadeh, M., 2013. Bioaccumulation Lead and Zinc metals in the liver and muscle of Cyprinus carpio, Rutilus frisii kuttom and Liza auratus. Journal of Food Hygiene. Vol. 3, No. 1, pp: 89-107.
9
Chen, Y.C. and Chen, M.H., 2001. Heavy metal concentrations in nine species of fishes caught in coastal waters off Ann-Ping, S.W. Taiwan. Journal of Food and Drug Analysis. Vol. 9, pp: 107-114.
10
Ekpo, K.E.; Asia, I.O.; Amoya, K.O. and Jegede, D.A., 2008. Determination of lead, cadmium and mercury in surrounding water and organs of some species of fish from Ikpobariver in Benincity, Nigeria, international journal of physical science. Vol. 3, No. 11, pp: 289- 292.
11
El-Morshedi, N.; Alzahrani, I.; Klizilbash, N.A.; Abdeen, A.; El-Shebbly, A.A. and El-Berri, A., 2014. Effect of Heavy metal pollutants on fish population in two Egyptian lakes. International journal of advanced research. Vol. 2, No. 1, pp: 408-417.
12
Filazi, A.; Baskaya, R. and Kum, C., 2003. Metal concentration in tissues of the Black sea fish (Mugil auratus) from Sinop-Icliman, Turkey. Human and Experimental Toxicology. Vol. 22, pp: 85-87.
13
Madany, I.M.; Wahab, A.A.A. and Al-Alawi, Z., 1996. Trace metals concentrations in marine organisms from the coastal areas of Bahrain, Arabian Gulf, Water, Air Soil Pollution. Vol. 91, pp: 233-248.
14
MAFF. 1995. Monitoring and surveillance of nonradioactive contaminants in the aquatic environment and activities regulating the disposal of wastes at sea, 1993. Aquatic Environment Monitoring Report No. 44. Direcorate of Fisheries Research, Lowestoft.
15
Mendil, D. and Dogan Uluozlu, O., 2007. Determination of metal levels in sedimentof five fish species from lakes in Tokat, Turkey. Food Chemistry. Vol. 101, pp: 739-745.
16
Oguzie, F.A. and Izerbigie, A.A., 2009. Heavy metals concentration in the organs of the silver Catfish, Chrysichthysnigrodigitatus (Lacepede) caught upstream of the Ikpoba river and the reservoir in benin city. Bioscience research communications. Vol. 21, No. 4, pp: 189-197.
17
Pourang, N.; Dennis J.H. and Ghourchian, H., 2005. Distribution of heavymetals in (PenaeusSemisulcatus) from Persian Gulf and possible role of metallothionein in their redistribution during storage. Environmental Monitoring and Assessment, 100:71-8.DOI:10.1007/s10661- 005-7061-8.
18
Rajkowska, M. and Protasowicki, M., 2013. Distribution of metals (Fe, Mn, Zn, Cu) in fish tissues in two lakes of different trophy in Northwestern Poland. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 185, pp: 3493-3502.
19
Shovon, M.N.H.; Majumdar, B.C. and Rahman Z., 2017. Heavy Metals (Lead, Cadmium and Nickel) Concentration in Different Organs ofThree Commonly Consumed Fishes in Bangladesh. Fisheries and Aquaculture Journal. Vol. 8, No. 2, pp: 1-6.
20
Turkmen, K.C.; Charg, N.S.; Kamala, C.T.; Sumanraj, D.S. and Rao, S., 2009. Determination of metal contaminations in sea foods from Marmara, Aegean and Mediterranean Seas: Twelve fish species. Journal of Food Chemistry. Vol. 108, pp: 794-800.
21
Uluturhan, E. and Kucuksezgin, F., 2007. Heavy metal contaminants in Red Pandora (Pagellus erythrinus) tissues from the Eastern Aegean Sea, Turkey. Water Research. Vol. 41, pp: 1185-1192.
22
Valinassab, T.; Daryanabard, R.; Dehghani, R. and Pierceo, G.J., 2006. Abundance of demersal fish resources in the Persian Gulf and Oman Sea. Journal of Marine Biology. Vol. 86, pp: 1-8.
23
WHO (World Health Organization). 1996. Health criteria other supporting information. In: Guidelines for Drinking Water Quality, 2nd ed. Vol. 2, pp: 31-388.
24
Yia, Y.J. and Zhang, S.H., 2012. The relationships between fish heavy metal concentrations and fish size in the upper and middle reach of Yangtze River. Procedia Environmental Sciences. Vol. 13, pp: 1699-1707.
25
Zhang, J.; Zhu, L.; Li, F.; Liu, C.; Qiu, Z.; Xiao, M. and Cai, Y., 2018. Comparison of toxic metal distribution characteristics and health risk between cultured and wild fish captured from Honghu City, China. International Journal of Environmental Research and Public Health. Vol. 15, No. 334, pp: 1-16.
26
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی برخی خصوصیات تغذیه ای و زیستی گل آذین ماهی خزری Atherina boyeri caspia در سواحل شهرستان تنکابن
به منظور مطالعه برخی خصوصیات تغذیه ای و زیستی گونه Atherina boyeri caspia، تعداد 104 قطعه از این گونه در دو فصل تابستان و پاییز سال 1395 در سواحل شهرستان تنکابن در استان مازندران به روش ماهیگیری با قلاب صید گردید. نمونه ها در فرمالین 10 درصد تثبیت و برای انجام مطالعات مورد نظر به آزمایشگاه منتقل شدند. میانگین طول-وزن این ماهیان در فصل تابستان به ترتیب 10/33 سانتی متر و 6/76 گرم و میانگین طول-وزن در فصل پاییز به ترتیب 10/30 سانتی متر و 7/46 گرم محاسبه شد. رابطه طول-وزن گل آذین ماهی در فصل تابستان و در فصل پاییز به صورت معادله به دست آمد. نتایج حاصل از بررسی فاکتور وضعیت، حاکی از مقدار بیشتر این شاخص در فصل پاییز نسبت به فصل تابستان بود. براساس نتایج به دست آمده از بررسی الگوی رشد پائولی، گل آذین ماهیان در سواحل تنکابن در هر دو فصل تابستان و پاییز دارای رشد آلومتریک منفی بودند که نشان دهنده سرعت کمتر رشد وزن نسبت به طول در این ماهیان است. هم چنین، شاخص خالی بودن معده حاکی از پرخوری نسبی این گونه بود. بررسی شاخص طول نسبی روده حکایت از رژیم غذایی گوشت خواری این گونه داشت. هم چنین بررسی شاخص شدت تغذیه ای نشان داد که این گونه در شرایط مناسب غذایی به سر می برد. شاخص ارجحیت غذایی نشان داد که این گونه از یک غذای اصلی تغذیه نمی کند و فقط خانواده های گاماریده و بوسموریده غذای فرعی آن ها در سواحل تنکابن بودند.
http://www.aejournal.ir/article_102026_ec1ca944ec14a0ed75bc548c333bf93a.pdf
2019-12-22
117
124
گل آذین ماهی خزری
دریای خزر
عادات غذایی
رابطه طول-وزن
پریا
هوشمند
pariahooshmand71@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
LEAD_AUTHOR
حسین
رحمانی
shemaya1975@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات، علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران
AUTHOR
سعید
اسماعیل پور
esmaeilpoorsaeid@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سیده محدیث
رکابی
mahdis.rekabi2013@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات، علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، ع. و بیرقدار، ا.، 1385. تغذیه و نیازهای غذایی ماهیان در آبزی پروری (با تاکید بر گونه های قابل پرورش در ایران). انتشارات جهاد دانشگاهی واحد صنعتی اصفهان. 310 صفحه.
1
امری صاحبی، ا.؛ تقوی، ح. و فضلی، ح.، 1393. بررسی رژیم غذایی شیشه ماهی در سواحل جنوب شرقی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. دوره 24، شماره 1، صفحات 121 تا 133.
2
ایگدری، م.؛ ایگدری، س. و پورصوفی، ط.، 1392. فراوانی و رابطه طول-وزن شیشه ماهی خزری (Atherina boyeri caspia) در نواحی ساحلی استان گلستان. اولین کنفرانس ماهی شناسی ایران. دانشگاه صنعتی اصفهان.
3
تقوی، ح.؛ امری صاحبی، ا. و فضلی، ح.، 1395. بررسی شاخص های رشد و تغذیه گل اذین ماهیان (Atherina boyeri Risso, 1810) در سواحل جنوب شرقی دریای خزر. مجله پژوهش های جانوری (مجله زیست شناسی ایران). دوره 29، شماره 3، صفحات 279 تا 291.
4
رجبی نژاد، ر. و آذری تاکامی، ق.، 1388. بررسی عادات غذایی ماهی شاه کولی در رودخانه سفیدرود. مجله بیولوژی دریا. دوره 1، شماره 1، صفحات 45 تا 63.
5
زاهدی، م. و رحیمی بشر، م.ر.، 1394. سن و رشد گل آذین ماهی (Atherina boyeri caspia) در سواحل جنوبی دریای خزر (دهانه رودخانه سفیدرود). مجله ماهی شناسی کاربردی. دوره 2، شماره 4، صفحات 71 تا 82.
6
عبدلی، ا.، 1378. ماهیان آب های داخلی ایران. موزه حیات وحش ایران (استان تهران). 378 صفحه.
7
Alavi Yeganeh, M.S. and Kalbassi, M.R., 2006. Study on diet composition of Caspian and goby, Neogobius fluviatilis pallasi, (Berg, 1916), in South of Caspian Sea (Noor Beach). Journal of Biology of Iran. Vol. 19, No. 2, pp: 180-190.
8
Ali Ilham, H. and Sari, M., 2015. Length-weight relationships of fish species in Marmara Lake, west Anatolia, Turkey. Croatian Journal of Fisheries. Vol. 73, pp: 30-32.
9
Bagenal, T., 1978. Methods for assessment of fish production in freshwater, Third edition, Blackwell Scientific Publication Oxford. London Edinbargh Melbourn. 365 p.
10
Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology. South Asian. 157 p.
11
Boudinar, A.S.; Chaoui, L. and Kara, M.H., 2016. Age, growth and reproduction of the sand smelt Atherina boyeri Risso, 1810 in Mellah Lagoon (Eastern Algeria). Journal of Applied Ichthyology. Vol. 32, pp: 302-309.
12
Euzen, O., 1978. Food habits and diet composition of some fish of Kuwait bulletin of marine sciences. Vol. 9, pp: 58-69.
13
Gencoglu, L. and Guler, F.E., 2016. Growth and reproduction of a marine fish, Atherina boyeri (Risso 1810) in a freshwater ecosystem. Turkish Journal of Zoology. Vol. 40, No. 4, pp: 534-542.
14
Haley, B.; Nemeth, M. and William, B., 2006. Ecology of juvenile chum Salmon from Norton Sound: estuarine habitat and the early marine life stage. Journal of coastal and shelf science. Vol. 76, pp: 395-403.
15
Hile, R., 1936. Age and growth of the cisco, Leucichthys artedi (Le Sueur), in the 12 lakes of the north eastern. Highlands. Wisconsin. Bull. U.S. Bur. Fish. Vol. 48, pp: 211-317.
16
Kazanchov, E.N., 1981. Fishes of the Caspian Sea. Moskva. 167 P.
17
Kottelat, M. and Freyhof, J., 2007. Handbook of European freshwater fishes. Publications Kottelat, Cornol and Freyhof, Berlin. 646 p.
18
Kovac, V. and Copp, G.H., 1996. Ontogenic patterns of relative growth in young roach Rutilus rutilus: whithin River Basin Comparisons. Ecography. Vol. 19, pp: 153-161.
19
Le Cern, E.D., 1951. The length-weight relationship and seasonal cycle in gonad-weight and condition in the perch, Perca fluviatilis. Journal of Animal Ecology. Vol. 20, pp: 201-219.
20
Mann, R.H.K., 1991. Growth and production. In I.J. Winfield, J.S. Nelson (Ed.). Cyprinid fishes systematic, Biology and exploitation. Chapman and Hall, London. pp: 446-481.
21
Palmer, C.J. and Culley, M.B., 1983. Aspects of the biology of the sand smelt Atherina boyeri (Risso, 1810) (Teleostei: Atherindae) at Old Bury-On-Severn, Gloucestershire, England. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 16, pp: 163-172.
22
Patimar, R.; Yousefi, M. and Hosseini, S.M., 2009. Age, growth and reproduction of the sand smelt Atherina boyeri Risso, 1810 in the Gomishan wetland southeast Caspian Sea. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 81, No. 4, pp: 457-462.
23
Pauly, D. and Munro, J.L., 1984. Once more on the comparison of growth in fish and invertebrates. The International Center for Living Aquatic Resources Management (ICLARM). Vol. 2, No. 1, pp: 85-98.
24
Quignard, J.P. and Pras, A., 1986. Atherinidae. In Whitehead, P.J.P.; Bauchot, M.L.; Hureau, J.C.; Nielsen, J. and Tortonese, E., (eds.) Fishes of the North-eastern Atlantic and the Mediterranean. UNESCO, Paris. Vol. 3, pp: 1207-1210.
25
Turkmen, M.; Erdogan, O.; Haliloglu, H.I. and Yildirim, A., 2000. Age, Growth and Reproduction of Acanthalburnus microlepis, filipi 1863 from the yagan region of the Aras River, Turkey. Vol. 25, pp: 127-133.
26
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی گروههای همسن و الگوی بازگشت شیلاتی ماهی هوور (Thunnus tonggol (Bleeker,1851، در آبهای استان هرمزگان
خانواده تونماهیان یکی از گونههای مهم آبزیان اقتصادی در آبهای خلیج فارس و دریای عمان محسوب میشوند. از گونههای مهم تون ماهیان در استان هرمزگان میتوان به ماهی هوور (Thunnus tonggol)، اشاره کرد. یکی از راه های برداشت مناسب از ذخایر ماهیان، داشتن اطلاعات درخصوص گروههای همسن و بازگشت شیلاتی آن هاست. نمونهبرداری تصادفی از پنج تخلیهگاه عمده صید در استان هرمزگان شامل مناطق جاسک، بندرسیریک، بندرعباس، بندرکنگ و بندر پارسیان از فروردین تا اسفند 1394انجام شد. جداسازی گروههای همسن (با استفاده از روش باتاچاریا) و الگوی بازگشت شیلاتی با استفاده از نرمافزار FiSAT II، صورت گرفت. نتایج نشان داد که محدوده طول چنگالی نمونهها 122-32 سانتیمتر و میانگین طول ماهیان صید شده طی ماههای مختلف تفاوت معنیدار داشت. میانگین طول ماهیان هوور در طی دوره بررسی 70/87 سانتیمتر طول چنگالی بهدست آمد. تعداد گروههای همسن ماهی هوور در ماههای متفاوت، بین 2 تا 6 گروه بود که بیش ترین برداشت از گروههای همسن متفاوت صورت میگرفت. الگوی بازسازی شیلاتی در طی سال مشاهده گردید اما تنها دارای یک اوج بود. بیشترین توان نسبی الگوی بازسازی در تیر با 16/63 و پس از آن در مرداد با 15/62 درصد مشاهده گردید. در مجموع نتایج نشان داد که بهرهبرداری اصولی از ذخایر این گونه صورت نمیگیرد و جهت برداشت بهینه، بازنگری در مدیریت صید این گونه لازم و ضروری است.
http://www.aejournal.ir/article_102490_1347f3d1cc691d80d2ab3c0031797a70.pdf
2019-12-22
125
132
ماهی هوور
الگوی بازگشت شیلاتی
گروههای همسن
خلیجفارس
دریای عمان
محمد
درویشی
m.darvishi70@yahoo.com
1
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسۀ تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد
مومنی
mmomeni6@gmail.com
2
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسۀ تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
سیامک
بهزادی
s_behzady@yahoo.com
3
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسۀ تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
علی
سالارپوری
salarpouri@yahoo.com
4
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسۀ تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
غلامعلی
اکبرزاده
ak_gh2010@yah00.com
5
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسۀ تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
درویشی، م.، 1395. ارزیابی توسعه صید سنتی ماهی هوور (Thunnus tonggol) با استفاده از شاخصهای دینامیک جمعیت در خلیجفارس و دریای عمان (آبهای استان هرمزگان). پایاننامه دکتری. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 192 صفحه.
1
درویشی، م.؛ کیمرام، ف.؛ طالبزاده، س.ع. و بهزادی، س.، 1382. بررسی ذخائر پنج گونه از تونماهیان در استان هرمزگان سالهای 1376، 1377 و 1378. مؤسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران. تهران. 183 صفحه.
2
درویشی، م.؛ بهزادی، س. و سالارپور، ع.، 1383. تخمریزی، همآوری و تغذیه ماهی هوور (Thunnus tonggol) در خلیجفارس و دریای عمان. مجله پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. سال 4، شماره 59، صفحات 70 تا 75.
3
کیمرام، ف.؛ درویشی، م. و حسینی، س.غ.، 1386. بررسی تغییرات جمعیت ماهیان سطحزی درشت (هوور، گیدر و...) در آبهای جنوبی ایران. مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. تهران. 173 صفحه.
4
نظری بجگان، ع.؛ یاسمی، م.؛ درویشی، م. و کامرانی، ا.، 1391. پارامترهای رشد و تعیین سن ماهی هوور (Thunnus tonggol) با استفاده از روش پیشرفت مدها در آبهای استان هرمزگان. نشریه شیلات. دانشگاه تهران. دانشکده منابع طبیعی. سال 9، شماره1، جلد65، صفحات 48 تا 57.
5
Abdussamad, E.M.; Koya, K.P.; Ghosh, S.; Rohit, P.; Joshi, K.K.; Manojkumar, B.; Prakasan, D.; Kemparaju, S.; Elayathu, M.N.K.; Dhokia, H.K. and Sebastine, M., 2012. Fishery, biology and population characteristics of longtail tuna, Thunnus tonggol (Bleeker, 1851) caught along the Indian coast. Indian Journal of Fisheries. Vol. 59, pp: 7-16.
6
Azpeitia, R.M.; López-Martínez, J.; Rábago-Quiroz, C.H.; Nevárez-Martínez, M.O. and Herrera-Valdivia, E., 2013. Growth and mortality rates of Pseudupeneus grandisquamis and Urobatis halleri bycatch species in the shrimp fishery. Hidrobiológica. Vol. 23, pp: 386-393.
7
Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology, South Asian publishers. 157 p.
8
Gayanilo, F.C.; Sparre, P. and Pauly, D., 1996. The FAO ICLARM Stock Assessment Tools (FiSAT), User's guide. (Fisheries). FAO Computerized Information Series. No. 8. ROME. 126 p.
9
Griffiths, S.P.; Fry, G.C.; Manson, F.J. and Lou, D.C., 2010. Age and growth of longtail tuna (Thunnus tonggol) in tropical and temperate waters of the central Indo Pacific. ICES Journal of Marine Science. Vol. 67, pp: 125-134.
10
Gulland, J.A. and Rosrnberg, A.A., 1992. Areview of length-based approaches to assessing fish stock. FAO Fisheries Technical.Paper No. 323. 100 p.
11
Gulland, J.A., 1983. Fish stock assessment: A basic of basic methods. FAO /Wiley Series on Food and Agriculture, Rome. 223 p.
12
Haddon, M., 2011. Modelling and QuantitativeMethods in Fisheries. 2nd edn,Chapman and Hall. 449 p.
13
Hasselblad, J.M., 1986. Estimation of parameters for a mixture of normal distributions, Techno metrics. Vol. 8, pp: 431-444.
14
IGFA. 2008. World record game fishes (International Game Fish Association). F. USA. Retrieved July 17, 2015. http://www.igfa.org.
15
IOTC. 2015. Assessment of longtail tuna using data poor catch-based methods (IOTC-2015-WPNT05-22), Retrieved August 12, 2016. http://www.iotc.org.
16
Khorshidian, K. and Carrara, G., 1993. An analysis of length frequency of Thunnus tonggol in Hormuzgan waters. Islamiqe republique of Iran. Expert consultation on Indian Ocean tunas, TWS/93/2/4. 12 p.
17
King, M., 2010. Fisheries biology assessment and management fishing. Second Edition. Blackwell Publishing Ltd. 382 p.
18
Pauly, D. and Morgan, G.R., 1987. Length-Based method in fisheries research. International Center for Living Aquatic Resources Management. Kuwait Institute for Scientific Research. 468 p.
19
Punt, A.; Smith, E.; Thomson, D.C.; Haddon, R.B.; He, M. and Lyle, J.M., 2001. Stock assessment of the blue grenadier Macruronus novaezelandiae resource off south eastern Australia. Marine and Freshwater Research. Vol. 52, pp: 701-717.
20
Ricker, W.E., 1975. Computation and interpretation of biological statistics of fish populations. Bull. Fish. Res. Board Can. Vol. 191, 382 P.
21
Sparre, P. and Venema, S.C., 1992. Introduction to tropical fish Stock Assessment. Part 1- Manual, FAO, Rome, Italy. 375 p.
22
Ziegler, P.E.; Lyle, J.M.; Haddon, M. and Ewing, G.P., 2008. Rapid changes in life-history characteristics of a long-lived temperate reef fish. Marine and Freshwater Research. Vol. 58, pp: 1096-1107.
23
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی رژیم غذایی و تولیدمثل ماهی شوریده (Otolithes ruber Bloch & Schneider, 1801) در سواحل دریای عمان (منطقه بندر جاسک)
رژیمغذایی وتولیدمثل ماهی شوریده(Otolithes ruber) طی دوره 12 ماهه نمونه برداری، از شهریور1395 تا مرداد 1396 در صیدگاه های دریای عمان ( منطقه جاسک ) مورد مطالعه قرار گرفت. در مجموع 600 عدد ماهی شوریده مورد زیست سنجی و کالبدشکافی قرار گرفت. میانگین فاکتور وضعیت و شاخص شدت تغذیه به ترتیب 1/01 و 307/66 به دست آمد و شاخص خالی بودن معده برای جنس های نر و ماده به ترتیب 45/63 و 37/64 بود. هم چنین شاخص وقوع شکار برای طعمه ماهی 75 درصد و برای طعمه اسکوئید 11/6 درصد و برای طعمه میگو 10/2 درصد برآورد شد. در بررسی اقلام غذایی موجود در معده ماهی شوریده طیف وسیعی از نمونه های ماهی استخوانی (انواعی از خانواده شوریده ماهیان، شورت ماهیان، شگ ماهیان، راشکوماهیان و بقایای اسکلت هضم شده ماهی)، سخت پوستان (میگو و مانتیس) و اسکوئید (سرپایان) ترکیبات غذایی در معده ماهی شوریده را تشکیل می دهند. هم چنین نتایج نشان داد از نظر اهمیت و فراوانی طعمه های صید شده انواع ماهی ها صید غالب ماهی شوریده می باشد. نسبت جنسی ماده به نر برای شوریده 1 به 0/72 بود که بیانگر اختلاف معنی دار است و فصل تخم ریزی آن در بهار به دست آمد.
http://www.aejournal.ir/article_102493_523a67d2fc25cf42981e23922f990301.pdf
2019-12-22
133
138
ماهی شوریده
تغذیه
تولیدمثل
دریای عمان
قاسم
فرخنده شیلسر
ghfarkhondeh25@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
محسن
صفائی
msn_safaie@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
احسان
کامرانی
eza47@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
تورج
ولی نسب
t_valinassab@yahoo.com
4
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
آژیر، م.ت.، 1387. بررسی یرخی از خصوصیات زیستی ماهی شوریده به منظور بهینه سازی زمان صید در آب های دریای عمان. مجله علمی شیلات ایران. سال 17، شماره 1، صفحات 1 تا 10.
1
اسکندری،غ.، 1376. زیست شناسی و تولیدمثل و تغذیه ماهی شوریده (Otolithes ruber) در سواحل خوزستان. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه شهید چمران اهواز. 112 صفحه.
2
اسکندری،غ.؛ هاشمی، س.ا.؛ تقوی، س.ا.؛ دهقانی مدیسه، س.؛ مباحی، ی. و آلبوعبید، ص.، 1392. بررسی وضعیت دخایر ماهی شوریده و میگوی سفید در سواحل خوزستان. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور. 194 صفحه.
3
امیری نیا،س.، 1375. تغذیه ماهی شوریده (Otolithes ruber) در سواحل استان خوزستان. مجله علمی شیلات ایران. سال 8، شماره 2، صفحات 31 تا 46.
4
بندانی، غ.؛ حسن زاده کیابی، ب. و اکرمی، ر.، 1386. عادات غذایی ماهی شوریده (Otolithes ruber) در آب های ساحلی چابهار. مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی. جلد 14، شماره 2، صفحات 23 تا 34.
5
خورشیدیان،ک.،1369. روش های ارزیابی ذخایر توسط کارشناسان ارزیابی کشور کره. مرکز تحقیقات خلیج فارس، بوشهر. 146 صفحه.
6
سواری، ا.؛ اتابک، ن.؛ غفله مرمضی، ج. و دهقان مدیسه، س.، 1389. رژیم غذایی بچه ماهیان شوریده (Otolithes ruber) در ساحلی استان خوزستان. نشریه اقیانوس شناسی. شماره 1، صفحات 11 تا 18.
7
قربانی، ن.؛ حقی، م.؛ ذاکری، م.؛ یاوری، و. شاکری، م.، 1396. رژیم غذایی ماهی شوریده (Otolithes ruber) در اندازه تجاری در سواحل خوزستان. نشریه پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. دوره 5، شماره 2، صفحات 31 تا 46.
8
کمالی،ع.؛ولی نسب، ت.؛ دهقانی، ر.؛ بهزادی،س. و جلالی، ک.، 1383 . بررسی برخی از ویژگی های زیستی سنگسر معمولی، شوریده و میش ماهی در آب های استان هرمزگان. پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان. گزارش نهایی. 91 صفحه.
9
Aysun, G.M.; Mahmut, Y. and Polat, O.N., 2001. Relative Importance of Fooditems Feeding of Chondrostoma egium, and Its Relation with the Time in of Annulus Formation. Journal of Marine Science. Vol. 23, No. 4, pp: 225-231.
10
Bianchi, G., 1985. Field guide to the commercial marine and brackish-water species of Pakistan. FAO. 200 p.
11
Biswas, S.P., 1993. Manual of Methods in Fish Biology and Ecology Laboratory. Dibrugrah University. 157 p.
12
Crabtree, R.E.; Peter, B.H. and Derke, S., 2001. Age, growth, and reproduction of permit (Trachinotus falcatus) in florida water, J. Fish. Bull. Vol. 100, pp: 26-34.
13
Carpenter, K.E. and Niem, V.H., 2001. The living marine resources of the western central Pacific, FAO species identification guide for fishery purposes, vol. 5, Bony fish part 3 (1st ed.), Food and Agriculture Organization of the United Nations Rome, Italy.
14
Dadzie, S., 2007. Vitellogenesis, oocyte maturation pattern, spawning rhythm and spawning frequency in Otolithes rubber (Sciaenidae) in the Kuwaiti waters of the Persian Gulf. Scientia marina. Vol. 71, No. 2, pp: 239-248.
15
Euzen, O., 1987. Food habits and diet composition of some fish of Kuwait. Kuwait. Bull. Mar. Sci. Vol. 9, pp: 58-65.
16
Fennessey, S.T., 2000. Aspects of the biology of four species of sciaenidae from the east coast of South Africa. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 50, pp: 259-269.
17
Funamoto, T.; Ichiro, A. and Yozo, W., 2004. Reproductive characteristics of Japanese anchovy, Engraulis japonicus, In two bays of japan, J. Fisheries Reasearch. Vol. 70, pp: 71-78.
18
Fischer, W. and Bianchi, G., 1984. FAO species identification sheets for fishery purposes. Western Indian Ocean (Fishing Area 51). Prepared and printed by FAO, united Nations. Pages variable, 4 p.
19
Grandcourt, E.M.; Al Abdessalaam, T.Z.; Francis, F. and Al Shamsi, A.T., 2005. Population biology and assessment of the orange-spotted grouper, Epinephelus coioide), in the southern persian Gulf. Fisheries Research. Vol. 74, pp: 55-68.
20
Gray, A.; Simenstad, C.A.; Bottoom, D.L. and Corn Well, T.J., 2002. Contrasting functional performance of juvenile salmon habitat in recovering wetlands of the Salmon River estuary, Oregon, USA. Journal of Restoration Ecology. Vol. 10, pp: 514-526.
21
James, P.S.B.R., 1986. The precent status of ribbon fish in India, special publication N. 24, Central Marine Fisheries Research Institute.
22
Riede, K., 2004. Global register of migratory species - from global to regional scales. Final Report of the R&D Project 808 05 081. Federal Agency for Nature Conservation, Bonn, Germany. 329 p.
23
Saborowski, R. and Buchhoz, F., 1996. Annual changes in the nutritive state of North sea.dab. Journal of fish Biology. Vol. 49, pp: 173-194.
24
Ueng, J.P.; Huang, B.Q. and Mok, H.K., 2007. Sexual Differences in the Spawning Sounds of the Japanese Croaker, Argyrosomus japonicus (Sciaenidae). Zoological Studies. Vol. 46, No. 1, pp: 103-110.
25
ORIGINAL_ARTICLE
اثرسطوح مختلف عصاره گیاه سالیکورنیا Salicornia sp بر عملکرد رشد و ترکیبات شیمیایی بدن ماهی کفال خاکستری (Mugil cephalus Linnaeus 1758)
تحقیق حاضر به منظور بررسی اثر سطوح مختلف عصاره گیاه سالیکورنیا (Salicornia sp) بر عملکرد رشد و ترکیبات شیمیایی ماهی کفال خاکستری (Mugil cephalus) به مدت 60 روز صورت گرفت. در این مطالعه، تعداد 240 قطعه ماهی با میانگین وزنی 0/43±8/42 گرم در یک طرح کاملاً تصادفی با 4 تیمار آزمایشی و 3 تکرار (با تعداد 20 قطعه در هر تکرار) مورد آزمایش قرار گرفتند. تیمار شاهد (بدون عصاره گیاه) و تیمارهای آزمایشی 2، 3 و 4 به ترتیب دارای 500، 1000 و 1500 میلی گرم بر کیلوگرم عصاره گیاه در غذا بودند. در پایان آزمایش، بالاترین وزن نهایی 2/03±26/74 گرم، میزان افزایش وزن به دست آمده 14/97±216/85 گرم، میزان رشد روزانه 0/12±0/20 درصد، نرخ رشد ویژه 0/17±1/91 درصد، میزان بقاء 1/14±93/ 60 درصد، کم ترین ضریب تبدیل غذایی 0/11±1/44 درصد، بالاترین راندمان کارایی پروتئین 1/39±9/03 درصد در تیمار حاوی 1500 میلی گرم بر کیلوگرم عصاره گیاه مشاهده شد که با تیمار شاهد دارای تفاوت معنی دار بود (0/05>P). بیش ترین میزان پروتئین خام و رطوبت در تیمار حاوی 1500 میلی گرم عصاره گیاه بر کیلوگرم غذا مشاهده شد. در مجموع براساس نتایج این تحقیق افزودن 1500 میلی گرم بر کیلوگرم عصاره گباه سالیکورنیا به جیره غذایی ماهی کفال خاکستری به منظور بهبود رشد وکیفیت لاشه در این ماهی پیشنهاد می شود.
http://www.aejournal.ir/article_102509_6e1dff61092d8ef01184edca8557fe08.pdf
2019-12-22
139
146
ماهی کفال خاکستری
عصاره گیاه سالیکورنیا
ترکیبات شیمبایی بدن
عملکرد رشد
پریا
اکبری
paria.akbary@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
LEAD_AUTHOR
قربان
نامدارعلی صوفی
2
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
AUTHOR
ظریف منش، ط. و ذریه زهرا، ج.، 1391. استفاده از فیتوبیوتیک ها (Phytobiotics) در توسعه آبزی پروری پایدار. اولین کنفرانس ملی راهکارهای دستیابی به توسعه پایدار. 7 صفحه.
1
Abdel-Tawwab, M.; Ahmad, M.H.; Seden, M.E.A. and Saker, S.F.M., 2010. Use of green tea, Camellia sinensis L., in practical diet for growth and protection of Nile tilapia, Oreochromisniloticus (L.), against Aeromonashydrophila infection. Journalof the World Aquaculture Society. Vol. 41, pp: 203-213.
2
Akhani, H., 2007. Diversity, biogeography, and photosynthetic pathways of Argusia and Heliotropium (Boraginaceae) in South-West Asia with an analysis of phytogeographical units. Botanical Journal of the Linnean Society. Vol. 155, No. 3, pp: 401-425.
3
AOAC. 1989. Assosiation of Official Analytical Chemists (AOAC). Official Method of Analysis of the Assosiation of Official Analytical Chemists, 15th ed. Assosiation of Official Analytical Chemists, Arlington, VA, USA. 374 p.
4
Arulvasu, C.H.; Mani, K.; Chandhirasekar, D.; Prabhu, D. and Sivagnanam, S.H., 2013. Effect of dietary administration of Zingiberofficinale on growth, survival and immune response of Indian major carp, Catlacatla (HAM.). International journal of pharmacy and pharmaceutical scinces. Vol. 5, pp: 2-10.
5
Bai, S.C.; Koo, J.W.; Kim, K.W. and Kim, S.K., 2001. Effects of Chlorella powder as a feed additive on growth performance in juvenile Korean rockfish, Sebastes schlegeli (Hilgendorf). Aquaculture Research. Vol. 32, pp: 92-98.
6
Cho, S.H.; Lee, S.M.; Park, B.H.; Ji, S.C.; Lee, J.; Bae, J. and Oh, S.Y., 2007. Effect of dietary inclusion of various sources of green tea on growth, body composition and blood chemistry of the juvenile olive flounder, Paralichthys olivaceus. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 49, pp: 33-35.
7
Choi, Y.H.; Lee, B.J. and Nam, T.J., 2015. Effect of dietary inclusion of Pyropia yezoensis extract on biochemical andimmune responses of olive flounder Paralichthys olivaceus Aquaculture. Vol. 435, pp: 347-353.
8
Citarasu, T., 2010. Herbal biomedicines a new opportunity for aquaculture industry. Aquaculture International.Vol. 18, pp: 403-414.
9
Ebrahim, D.I.; Tangestani, R.; Alizadeh Dvghyklayy, E. and Zare, P., 2013. Effect of different levels of garlic essential oil on growth, feed and carcass composition of beluga (Huso huso) Rearing young. Journal of Marine Science and Technology. Vol. 11, pp: 1-12.
10
Essaidi, I.; Brahmi, Z.; Snoussi, A.; Haj Koubaier, H.B.; Casabianca, H.; Abe, N.; El Omri, A.; Chaabouni, M.M. and Bouzouita, N., 2013. Phytochemicalinvestigation of Tunisian Salicorniaherbacea L., antioxidant, antimicrobial and cytochrome P450 (CYPs) inhibitory activitiesof its methanol extract. Food Control. Vol. 32, pp: 125-133.
11
Feroz Khan, K.; Sankar, G.; Ramamoorthy, K. and Sugesh, S., 2013. Antibacterial activities of salt marsh. plants against marine ornamental fish pathogens. American Journal of Drug Discovery and Development. Vol. 2, pp: 1-9.
12
Gawlicka, A.; Parrent, B.; Horn, M.H.; Ross, N.; Opstad, I. and Torrissen, O.J., 2000. Activity of digestive enzyme in yolk- sac larvae of Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus) indication of readiness for first feeding. Aquaculture. Vol. 184, pp: 304-314.
13
Harikrishnan, R.; Nisha, M.R. and Balasundaram, C., 2003. Hematological and biochemical parameters in common carp, Cyprinus carpio, following herbal treatment for Aeromonas hydrophila infection. Aquaculture. Vol. 221, pp: 41-50.
14
Havilah, K.; Immaculate Jeyasanta, K. and Patterson Edward, J.K., 2015. Antibacterial Activity from Marine Halophyte Salt Marsh Plant (Salicornia brachiata) against Bacterial Pathogens Middle-East. Journal of Scientific Research. Vol. 23, No. 7, pp: 1262-1269.
15
Hwang, J.H.; Lee, S.W.; Rha, S.J.; Yoon, H.S.; Park, E.S.; Han, K.H. and Kin, S.J., 2013. Dietary green tea extract improves growth performance, body composition, and stress recovery in the juvenile black rockfish,Sebastesschlegeli. Aquaculture International. Vol. 21, pp: 525-538.
16
Isca, V.; Seca, A.M.; Pinto, D.C. and Silva, A., 2014. An overview of Salicornia genus: the phytochemical and pharmacological profile. Natural products: Research Reviews. Vol. 2, pp: 145-179.
17
Javadzadeh, M.; Salarzadeh, A.R.; Yahyavi, M.; Hafezieh, M. and Darvishpour, H., 2012. Effect of garlic extract on growth and survival rate in Litopenaeus vannami post larval. Iranian Scientific Fisheries Journal. Vol. 21, pp: 39-46.
18
Kang, S.; Kim, D.; Lee, B.H.; Kim, M.R.; Chiang, M. and Hong, J., 2011. Antioxidant Properties and Cytotoxic Effects of Fractio Glasswort (Salicornia herbacea) Seed Extracts on Human Cells. Food Science and Biotechnology. Vol. 20, No. 1, pp: 115-122.
19
Kharrati-Koopaee, H.; Heydarian, Z.; Shekarforoush, S.Sh.; Golmakani, M.T.; kharrati-kopaei, M. and Gorji Makhsous, S., 2016. The antibacterial activities of six organic solvent extracts of Salicornia iranica against Salmonella typhimurium. Iranian Journal of Veterinary Science and Technology. Vol. 8, No. 2, pp: 25-26.
20
Kumar, S.R.; Ramanathan, G.; Subhakaran, M. and Inbaneson, S.J., 2009. Antimicrobial compounds from, marine halophytes for silkworm disease treatmentInt. Journal of. Medicin and Medical Science. Vol. 1, pp: 184-191.
21
Lee, D.H.; Ra, C.S.; Song, Y.H.; Sung, K.I. and Kim, J.D., 2012. Effects of dietary garlic extract on growth, feed utilization and whole body composition of juvenile sterlet sturgeon (Acipenser ruthenus). Asian - Australasian Journal of Animal Sciences. Vol. 25, pp: 577-583.
22
Magnadottir, B., 2006. Innate immunity of fish (overview). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 20, pp: 137-151.
23
Mahdavi, S.; Yeganeh, S.; Firouzbakhsh, F. and Janikhalili, K.H., 2014. Effects of Supplementary Fennel (Foeniculumvulgare) Essential Oil of Diet on Growth, Survival, Body Composition and Hematological Parameters of Rutilus frisii kutum Fry. Fisheries Science & Technology. Vol. 3, pp: 79-90.
24
Patel1, S., 2016. Salicornia: evaluating the halophytic extremophile as a food and a pharmaceutical candidate. Biotechnology. Vol. 6, No. 104, pp: 2-10.
25
Rahimi Yadkuri, N., 2013. Effect of different levels Zingiberofficinale extract on growth parameters, feed, carcass biochemical composition and digestive enzymes in Mesopotamichthys sharpeyi, thesis of MS.c Khorramshahr University of Marine Science and Technology. 68 p.
26
Rao, Y.Y.; Das, B.K.; Iyotymayee, P.; Chakrabarti, R., 2006. Effect of Achyranthes aspera on the immunity and survival of Labeo rohita infected with Aeromonas hydrophila. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 20, pp: 265-273.
27
Sakai, M., 1999. Current research status of fish immune stimulants. Aquaculture. Vol. 172, pp: 63-92.
28
Shalaby, A.M.; Khattab, Y.M. and Abdel rahman, A.M., 2006. Effects of garlic (Allium sativum) and chloramphenicol on growth performance, physiological parameters and survival of Nile Tilapia (Oreochromis niloticus). Journal of Venomous Animimals and Toxins Including Tropical Diseases. Vol. 12, pp: 172-201.
29
Sivaram, V.; Babu, M.M.; Citarasu, T.; Immanuel, G.; Murugadass, S. and Marian, M.P., 2004. Growth and immune response of juvenile greasy groupers (Epinephelustauvina) fed with herbal antibacterialactive principle supplemented diets against Vibrioharveyinfections. Aquaculture. Vol. 237, pp: 9-20.
30
Sönmez, A.Y.; Bilen, S.; Alak, G.; Hisar, O.; Yanık, T. and Biswas, G., 2015. Growth performance and antioxidant enzyme activities in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) juveniles fed diets supplemented with sage, mint and thyme oils. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 41, pp:165-175.
31
Wahli, T.; Verlhac, V.; Griling, P.; Gabaudan, J. and Aebischer, C., 2003. Influence of dietary vitamin C on the wound healing process in rainbow trout (Oncorhyncus mykiss) Aquaculture. Vol. 225, pp: 371-386.
32
Wang, Y.; Kong, L.J.; Li, C. and Bureau, P., 2006. Effect of replacing fish meal with soybean meal on growth, feed utilization and carcass composition of cuneate drum (Nibeamiichthioides). Aquaculture. Vol. 261, pp: 1307-1313.
33
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اکولوژی تغذیه و تخمین سطح غذایی گربه ماهی بزرگ (Netuma thalassina) در آب های شمال دریای عمان
مطالعه رژیم غذایی گربه ماهی بزرگ (Netuma thalassina) با بررسی ۱۹۸ عدد ماهی صید شده در آب های دریای عمان، به صورت فصلی انجام گرفت. در این مطالعه شاخص فراوانی وقوع شکار، شاخص شدت تغذیه، شاخص خالی بودن معده، میانگین سطح غذایی و نرخ غذای مصرفی محاسبه گردید. در مجموع ۶ رده تاکسونومیک عمده در محتویات معده این گونه شناسایی شد. گروه های شناسایی شده شامل بندپایان (سخت پوستان عالی و سایرسخت پوستان)، نرم تنان (سرپایان، دوکفه ای ها و شکم پایان)، خارپوستان، نماتدها، گیاهان دریایی و ماهیان استخوانی بود. فراوان ترین ماده غذایی یافت شده در معده براساس شاخص عددی سخت پوستان با 44/71 درصد بود. با توجه به شاخص حضور شکار، ماهی های استخوانی هضم شده (55/55 درصد=FP) به عنوان غذای اصلی، خرچنگ های خانواده پورتونیده (25/64 درصد= FP) و خانواده Xanthidae (درصد 13/67= FP)به عنوان غذای فرعی و گیش ماهیان خانواده Carangidae (درصد 8/54= FP) اتفاقی تقسیم بندی شدند. نتایج بررسی شدت تغذیه نشان داد بیش ترین میزان شدت تغذیه در بهار و کم ترین آن در پاییز می باشد. سطح غذایی گربه ماهی بزرگ در منطقه مورد مطالعه 3/61 تخمین زده شد.
http://www.aejournal.ir/article_102511_f6ba08456981636614d1e45c7224725b.pdf
2019-12-22
147
154
گربه ماهی بزرگ (Netuma thalassina)
غذای مصرفی
سطح غذایی و دریای عمان
مینا
علی محمدی
minaalimohammadi8182@gmail.com
1
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
تورج
ولی نسب
t_valinassab@yahoo.com
2
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
احسان
رمضانی فرد
eramezanifard@gmail.com
3
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
فریبرز
احتشامی
ehteshamei@yahoo.com
4
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
پوربابایی حسن سرایی، ر.؛ کامرانی، ا.؛ گلمرادی زاده، ا.؛ سجادی، م. و گلمرادی زاده، آ.، ۱۳۹۲. بررسی رژیم غذایی گربه ماهی بزرگ گونه Arius thalassinus در شرق جزیره قشم (خلیج فارس). مجله بهره برداری و پرورش آبزیان. جلد ۲، شماره ۴، صفحات ۱۱۳ تا ۱۲۸.
1
تقوی مطلق، ا.؛ ولی نسب، ت.؛ وهاب نژاد، آ.؛ حکیم الهی، م.؛ اسکندری، غ.؛ اسماعیلی، ع.؛ قاسمی، ش.؛ نوری نژاد، م.؛ میاحی، ی.؛ علوی، ع.؛ عوفی پور، م.؛ قاسمی، ص.؛ درویشی، م.؛ سالارپور، ع.؛ طالب زاده، ع.؛ خدادادی، ر.؛ مبرزی، ع.؛ بیات، ی. و آلبوعبید، ص.، ۱۳۹۴. تعیین روابط اکولوژیک گونه های اقتصادی ماهیان در آب های خلیج فارس (هرمزگان، بوشهر و خوزستان). گزارش نهایی طرح تحقیقاتی. موسسه علوم تحقیقلات شیلاتی کشور.
2
چراغی شوی، م.؛ ولی نسب، ت. و حافظیه،م.،۱۳۹۲. شاخص های تغذیه ای گربه ماهی خاکی (Arius dussumieri) دریای عمان (سیستان و بلوچستان). مجله علمی شیلات ایران. سال۲۲، شماره ۳، صفحات ۳۱ تا ۴۰.
3
صادقی، ن.، ۱۳۸۰. ویژگیهایزیستی و ریخت شناسی ماهیان جنوب ایران (خلیج فارس و دریای عمان). انتشارات نقش مهر.
4
طالب زاده، ع.، ۱۳۷۶. بررسی بیولوژیک گونه های حلوا سفید، کفشک تیزدندان، حلوا سیاه، شوریده، سنگسر، گربه ماهی غول پیکر، گربه ماهی خارنازک. گزارش طرح تحقیقاتی موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان.
5
کریمی، م.؛ محمدی زاده، ف.؛ بحری، ا. و مجاز، ع.، ۱۳۹۱. بررسی رژیم غذایی گربه ماهی (Arius thalassinus) در خلیج فارس (آب های سواحل بندرعباس)، همایش ملی شیلات و آبزیان.
6
محمدخانی، ح.، ۱۳۷۶، ترجمه ارزیابی گربه ماهیان دریایی هند. ۱۶ صفحه.
7
ولی نسب، ت.؛دهقانی، ر.؛ کمالی، ع. و خورشیدیان، ک.، ۱۳۹۰. گزارش نهایی تعیین میزان توده زنده کفزیان خلیج فارس و دریای عمان به روش مساحت جاروب شده، موسسه تحقیقات شیلات ایران.
8
ولی نسب، ت.؛ آژیر، م.ت.؛ دهقانی، ر.؛ مبرزی، ع.؛ هاشمی، س.ا. و دریانبرد، غ.، ۱۳۹۲. تعیین میزان توده زنده کفزیان خلیج فارس و دریای عمان به روش مساحت جاروب شده. موسسه تحقیقات شیلات ایران. ۳۸۴ صفحه.
9
Al-Hassan, J.M.; Clayton, J.M.; Thomson, D.A. and Criddle, R.S., 1987. Taxonomy and distribution of Ariidae catfishes from the Arabian Gulf. J. Nat. Hist. Vol. 22, pp: 473-487.
10
Berg, J., 1979. Discussion of the methods of investigating the food of fishes with reference to a preliminary study of the food of Gobiusculus flavescent (Gobiidae). Marine biology Journal. Vol. 50, pp: 263-273.
11
Biswass, S.P. 1993. Manual of methods in fish biology. South Asian Publishers. 157 p.
12
Blaber, S.J.M.; Brewer, D.T. and Salini, J.P., 1993. Diet and dentition in tropical Ariidae catfishes from Australia, Environmental Biology of Fishes. Vol. 40, pp: 159-174.
13
Bolliet, V.; Aranda, A. and Boujard, T., 2001. Demand feeding rhythm in rainbow trout and European catfish synchronization by photoperiod and food availability. Physiology and behavior. Vol. 73, No. 5, pp: 625-633.
14
Bond, C.E., 1979. Biology of fishes. Sandery Publication, Philadelphia. USA. pp: 391-400.
15
Brewer, D.T.; Blaber, S.J.M. and Salini, J.P., 1991. Predation on penaeid prawns by fishes Ramanatham, N. and Venkatra, M., 1994. Manual of fish biology. Published by Raju 20. Primlani oxford. New Delhi, Bombay. 83 P.
16
Carpenter, K.E.; Krupp, F.; Jones, D.A. and Zajonz, U., 1997. Living marine resources of Kuwait, Eastern Saudi Arabia, Bahrain, Qatar and UAE. FAO Species Identification Field Guide for Fishery Purposes. FAO Publication. 293 P.
17
Dadzie, S.; Abou- Seedo, F. and Al-Qatton, E., 2000. The food and feeding habits of the silver pomfret, Pompus argenteus (Euphrasen), in Kuwait waters. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 16, pp: 61-67.
18
Eriksson, L. and Veen, T.V., 1980. Circadian rhythm in the brown bullhead Ictalurus nebulosus(Teleostei): Evidence for an endogenous rhythm in feeding, locomotor and reaction time behavior. Canada Journal Zoology. Vol. 58, No. 57, pp: 1899-1907.
19
Hyslop, E.J., 1980. Stomach contents analysis-A review of methods and their application, Journal of Fish Biology. Vol. 17, pp: 411-429.
20
Jereb, P. and Roper, K., 2005. Cephalopods of the world. FAO species catalogue for fishery purposes. Vol. 1, No. 4, 262p.
21
Khanna, S.S. and Singh, H.R., 2006. Fish Biology and Fisheries. 507: 165-.371 King M., 1995. Fisheries Biology, Assessment and Management. Blackwell Science Ltd., London, UK. 341 p.
22
Moyle, P.B. and Cech, J.J., 1996. Fishes: An introduction to ichthyology. New Jersey: Prentice Hall. 590 p.
23
Nasir, N.A., 2000. The food and feeding relationships of the fish communities in the inshore waters of Khor Al-Zubair, northwest Arabian Gulf. Cybium. Vol. 24, No. 1, pp: 89-131.
24
Palomares, M.L.D. and Pauly, D., 1999. A multiple regression model for predicting the food consumption of marine fish populations. Marine and Freshwater Research. Vol. 40, No. 3, pp: 259-273.
25
Pauly D., 1983. Some simple methods for the assessment of tropical fish stocks. FAO Fish. Technical Paper. Vol. 234, 52 p.
26
Pauly, D.and Christensen, V., 2000. Trophic Levels of Fishes. In: (Froese, R. and Pauly, D., eds.). Fish Base: Concepts, Design and Data Sources. Manila, Philippines: ICLAR. 181 p.
27
Pauly, D.; Christensen, V.; Dalsgaard, J.; Froese, R. and Torres, F., 1998. Fishing down marine webs. Journal Science, new series. Vol. 279, No. 5352, pp: 860-863.
28
Salini, J.P.; Blaber, S.J.M. and Brewer, D.T., 1990. Diets of piscivorous fishes in a tropical Australian estuary with particular refrence to predation on penaeid prawns. Mar. Biol. Vol. 105, pp: 363-374.
29
Sparre, P. and Venema, S.C., 1998. Introduction to tropical fish stock assessment. Part 1. FAO Fisheries.
30
Technical Paper No. 306.1, Rome, Italy. 450 p.
31
Webb, P.W., 1979. Partitioning of energy into metabolism and growth. In Ecology of Freshwater fish production (Ed.Ms. Gerking), Blackwell, London, pp: 184-214. in Albatross Bay, Gulf of Carpntaria. Mar. Biol. Vol. 109, pp: 231-240.
32
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی فاکتورهای سرطان زایی و غیرسرطان زایی فلزات سنگین در عضله ماهیان غالب رودخانه بهمنشیر
این تحقیق با هدف ارزیابی ریسک سرطان زایی و غیرسرطان زایی فلزات سنگین جیوه، کادمیوم و سرب درعضله ماهیان بیاح (Liza abu)، شانک زرد باله (Acanthopagrus latus) و شبه شوریده چشم درشت (Pennahia anea) رودخانه بهمنشیر در فصل زمستان انجام شد. 90 نمونه ماهی شبه شوریده چشم درشت، بیاح و شانک زرد باله به صورت کاملاً تصادفی از 5 ایستگاه مورد مطالعه به وسیله تورهای گوشگیر رودخانه ای توسط صیادان بومی منطقه تهیه شدند. سنجش فلزات سنگین مورد مطالعه بهروش جذب اتمی و سیستم کوره گرافیتی با کمک دستگاه Perkin Elmer 4100 انجام شد. به منظور تکمیل اطلاعات در بخش مخاطرات وارده بر سلامت انسانی اقدام به تکمیل پرسشنامه به صورت تصادفی گردید. حداقل و حداکثر وزن مردان و زنان مورد مطالعه 54 و 107 کیلوگرم و میانگین وزنی کیلوگرم 13/803±73/62 بود. غلظت جیوه، سرب، کادمیوم در عضله ماهی شانک زرد باله بالاتر از شبه شوریده چشم درشت و بیاح به دست آمد (0/05>P). الگوی تجمع فلزات سنگین در عضله سه گونه بیاح، شانک زرد باله و شبه شوریده چشم درشت به صورت سرب>کادمیوم>جیوه بود. در سه گونه ماهی می توان گفت که هر سه گونه نسبت به سرب سرطان زایی داشته اما نسبت به جیوه فقط گونه شانک از حد استاندارد خارج بوده است. درخصوص کادمیوم می توان گفت که هر سه گونه در محدوده معرفی شده بوده و برای مصرف انسان از نظر سرطان زایی مشکلی ایجاد نمی کنند.
http://www.aejournal.ir/article_102590_d19682e560d43a5f82be30e271236258.pdf
2019-12-22
155
162
ارزیابی ریسک
فلزات سنگین ماهی
عضله
رودخانه بهمنشیر
آزیتا
کوشافر
koshafar_1349@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
احمد
سواری
a.savari@kmsu.ac.ir
2
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
AUTHOR
نسرین
سخایی
n.sakhaie@kmsu.ac.ir
3
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
AUTHOR
بیتا
ارچنگی
bita.archangi@gmail.com
4
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
AUTHOR
فاطمه
کریمی اورگانی
fatemeh_karimi88@yahoo.com
5
گروه محیط زیست، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
AUTHOR
اسماعیلی ساری،ع.، 1381. آلاینده ها، بهداشت و استاندارد محیط زیست. انتشارات نقش مهر، چاپ اول، تهران. 767 صفحه.
1
اسماعیلی ساری، ع.؛ عبداله زاده، ا.؛ جورابیان شوشتری، ش. و قاسمپوری، س.م.، 1390. تعیین حد مجاز مصرف ماهی از نظر ترکیبات جیوه. مجله دانشگاه علوم پزشکی فسا. جلد 1، شماره 2، صفحات 24 تا 31.
2
پناهنده، م.؛ منصوری، ن.؛ خراسانی، ن.؛ کرباسی، ع. و ریاضی، ب.، 1392. تخمین مواجهه و خطر بالقوه ناشی از مصرف اردک ماهی (Esox lucius)، ماهی شاه کولی (Chaleaiburnus chaleoide) و کپور معمولی (Cyprinus carpio) حاوی سه فلز سرب، کادمیوم و کروم در بومیان حاشیه تالاب انزلی. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. جلد 5، شماره 16، صفحات 83 تا 90.
3
چراغی، م.؛ اسپرغم، ا. و نوریایی، م.ح.، 1391. ارزیابی ریسک کادمیوم ناشی از مصرف ماهی شیربت (Barbus grypus) رودخانه اروند. مجله اکوبیولوژی تالاب. جلد 4، شماره 13، صفحات 75 تا 82.
4
چراغی، م.؛ پورخباز، ح.ر. و جوانمردی، س.، 1392. تعیین غلظت جیوه در ماهی خوراکی بیاح (Liza abu) رودخانه کارون. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. جلد 23، شماره 103، صفحات 105 تا 113.
5
رجایی، ق.؛ پورخباز، ع. و حصاری مطلق، س.، 1391. ارزیابی ریسک فلزات سنگین منابع آب زیرزمینی دشت علی آباد کتول. مجله دانشگاه علوم پزشکی خراسان شمالی. جلد 4، شماره 2، صفحات 155 تا 163.
6
رومیانی، ل.؛ ولایت زاده، م. و مشایخی، ف.،1395. ارزیابی خطر فلزات سنگین جیوه، کادمیوم، سرب و آرسنیک در دو گونه ماهی شیربت (Tor grypus) و سیاه ماهی (Capoeta capoeta) در رودخانه حله بوشهر. مجله زیست شناسی تکوینی. جلد 8، شماره 4، صفحات 45 تا 58.
7
عسکری ساری، ا.؛ خدادادی، م.؛ کاظمیان، م.؛ ولایت زاده، م. و بهشتی، م.، 1389. اندازه گیری و مقایسه فلزات سنگین (Zn، Mn، Cu، Fe) در ماهی بیاح (Liza abu) رودخانه های کارون و بهمنشیر استان خوزستان. مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. جلد 5، شماره 1، صفحات 61 تا 70.
8
عسکری ساری، ا.؛ ولایت زاده، م. و بهشتی، م. و خدادادی، م.، 1390. میزان تجمع فلزات سنگین جیوه، سرب و کادمیوم در بافت های ماهی بیاح (Liza abu) رودخانه های کارون و بهمنشیر استان خوزستان. مجله علمی شیلات ایران. جلد 20، شماره 2، صفحات 131 الی 140.
9
عسکری ساری، ا. و ولایت زاده، م.، 1393. فلزات سنگین در آبزیان. انتشارات دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. چاپ اول. 380 صفحه.
10
کاظمیان،م.؛عسکری ساری،ا. و سنجر، ف.، ۱۳۸۸. اندازه گیری و مقایسه سرب و کادمیوم در دو گونه ماهی شانک زرد باله Acanthopagrus latus و زمین کن دم نواری Platycephalus indicus در منطقه صیادی بندر ماهشهر. همایش بین المللی خلیج فارس، بوشهر، دانشگاه آزاد اسلامی واحد بوشهر. 11 صفحه.
11
کوشافر، ا. و ولایت زاده، م.، 1393. مقایسه تجمع زیستی فلزات سنگین در عضله دو گونه ماهی بیاح آب شیرین (Liza abu) و شانک زرد باله (Acanthopagrus latus) رودخانه بهمنشیر در فصل تابستان. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. جلد 6، شماره 22، صفحات 59 تا 72.
12
کوشافر، ا.؛ سواری، ا.؛ سخایی، ن.؛ ارچنگی، ب. و کریمی اورگانی، ف.، 1397. تعیین سطح آلودگی ناشی از فلزات سنگین در آب و رسوبات رودخانه بهمنشیر. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. جلد 10، شماره 36، صفحات 53 تا 64.
13
فتاحی پور، س.؛ نبوی، س.م.ب.؛ نیک پور، ی. و رجب زاده، ا.، 1393. بررسی تجمع زیستی جیوه کل در بافت خوراکی و غیرخوراکی ماهی بیاح (Liza persicus) و ارتباط آن با برخی مشخصات زیست سنجی در محدوده خوریات ماهشهر. دومین همایش ملی و تخصصی پژوهش های محیط زیست ایران، انجمن ارزیابان محیط زیست هگمتانه، همدان. 14 صفحه.
14
ولایت زاده، م. و نجفی، م.، 1392. اکولوژی رودخانه ها و تالاب های استان خوزستان. انتشارات ترقی، چاپ اول، تهران. 188 صفحه.
15
ولایت زاده، م.؛ عسکری ساری، ا.؛ خدادادی، م.؛ کاظمیان، م. و بهشتی، م.، 1393. اندازه گیری و مقایسه غلظت فلزات سنگین جیوه، سرب و کادمیوم در بافت های ماهی بیاح (Liza abu) رودخانه های کارون و دز استان خوزستان. فصلنامه علوم و تکنولوژی محیط زیست. جلد 16، شماره 3، صفحات 51 تا 61.
16
Agah, H.; Leermakers, M.; Elskens, M.; Fatemi, S.M.R. and Baeyens, W., 2009. Accumulation of trace metals in the muscle and liver tissues of five species from the Persian Gulf, J of Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 157, pp: 499-514.
17
Ahmad, A.K. and Shuhaimi-Othman, M., 2010. Heavy metal concentration in sediments and fishes from Lake Chini, Pahang, Malaysia. J of Biological Sciences. Vol. 10, No. 2, pp: 93-100.
18
Alonso, M.L.; Montana, F.P.; Miranda, M.; Castillo, C.; Hernandez, J. and Benedito, J., 2004. Interactions between toxic (As, Cd, Hg and Pb) and nutritional essential (Ca, Co, Cr, Cu, Fe, Mn, Mo, Ni, Se, Zn) elements in the tissues of cattle from NW Spain. J of BioMetals.Vol. 17, pp: 389-397.
19
Al-Najare, G.A.; Hantoush, A.A.; Al-Shammary A.C. and Al-Saad, H.T., 2013. Bioaccumulation of heavy metals in Acanthopagrus latus collected from Iraqi marine waters. Iraqi Journal of Aquaculture. Vol. 10, No. 2, pp: 107-122.
20
Anderson, J.; Levine, A.; Peterson, J.; Paulsen, M.; Seidel, P. and Turnblom, S., 2010. Human health risk assessment guidance. Oregon department of environmental quality, environmental cleanup program. 10-L8023-10/18.
21
Bahnasawy, M.; Khidr, A. and Dheina, N., 2011. Assessment of heavy metal concentrations in water, plankton, and fish of Lake Manzala, Egypt. Turkish Journal Zoology. Vol. 35, No. 2, pp: 271-280.
22
Bellassoued, K.; Hamza, A.; Pelt, J. and Elfeki, A., 2013. Seasonal variation of Sarpa salpa fish toxicity, as related to phytoplankton consumption, accumulation of heavy metals, lipids peroxidation level in fish tissues and toxicity upon mice. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 185, pp: 1137-1150.
23
Berlin, M., 1985. Handbook of the Toxicology of Metals. Elsevier Science Publishers, London. Editors 2nd. Vol. 2, pp: 376-405.
24
Cura, J. and Bernay, W., 1999. Ecological and Human health risk assessment guidance for aquatic environments, dredging operation and environmental research program. Technical report 4.
25
Derrag, Z.; Dali, Y. and Mesli, L., 2014. Seasonal Variations of Heavy Metals in Common Carp (CyprinusCarpio L., 1758) Collected from Sikkak Dam of Tlemcen (Algeria).Journal of Engineering Research and Applications. Vol. 4, No. 1, pp: 1-8.
26
Hantoush, A.A.; Al-Najare, G.A.; Amteghy, A.H.; Al Saad, H.T. and Abd Ali, K., 2012. Seasonal variations of some trace elements concentrations in Silver Carp Hypophthalmichthys molitrix Consolidated from farms in central Iraq. Marsh Bulletin. Vol. 7, No. 2, pp: 126-136.
27
Hosseinkhezri, P. and Tashkhourian, J., 2011. Determination of heavy metals in Acanthopagrus latus from the Bushehr seaport (coastal of Persian Gulf), Iran. International Food Research Journal. Vol. 18, pp: 791-794.
28
Lei, Z.; Qianjiahua, L.; Shinguang, SH.; Nan, Z.; Quishi, S. and Cheng, L., 2015. Heavy metal pollution, fractionation and potential ecological risks in sediments from lake Chaohu and the sorrunding river. International Journal of environment. Vol. 12, pp: 14115-14131.
29
Levengood, J.M.; Soucek, D.J.; Sass, G.G.; Dickinson, A. and Epifanio, J.M., 2014. Elements of concern in fillets of bighead and silver carp from the Illinois River, Illinois. Chemosphere. Vol. 104, pp: 63-68.
30
Majnoni, F.; Mansouri, B.; Rezaei, M.R. and Hamidian, A.H., 2013. Metal concentration in tissues of common carp, Cyprinus carpio and silver carp, Hypophthalmichthys molitrix from the Zarivar Wetland in Weastern Iran. Archives of Polish Fisheries. Vol. 21, pp: 11-18.
31
Meucci, V.; Laschi, S.; Minunni, M.; Pretti, C.; Intorre, L.; Soldani, G. and Mascini, M., 2009. An optimized digestion method coupled to electrochemical sensor for the etermination of Cd, Cu, Pb and Hg in fish by square wave anodic stripping voltammetry. Journal of Talanta. Vol. 77, Vol. 3, pp: 1143-1148.
32
Mortazavi, M.S. and Sharifian, S., 2011. Mercury Bioaccumulation in Some Commercially Valuable Marine Organisms from Musa Bay, Persian Gulf. International J of Environmental Research. Vol. 5, No. 3, pp: 757-762.
33
Niazi, A.; Momeni-Isfahani, T. and Ahmari, Z., 2009. Spectrophotometric determination of mercury in water samples after cloud point extraction using nonionic surfactant triton x-114. J of hazardous materials. Vol. 165, pp: 1200-1203.
34
Regional Organization for the Protection of the Marine Environment (ROPME). 1999. Manual of oceanographic observations and pollutant analysis methods. ROPME. Kuwait. Vo1. 20.
35
Saei-Dehkordi, S.S.; Fallah, A.A. and Nematollahi, A., 2010. Arsenic and mercury in commercially valuable fish species from the Persian Gulf: influence of season and habitat. Food and Chemical Toxicology. Vol. 48, No. 10, pp: 2945-2950.
36
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی روند تغییرات طول و وزن و جنسیت و میزان خاویاردهی و CPUE ماهی خاویاری گونه قره برون Acipenser persicus در سواحل جنوبی خزر محدوده استان گلستان 1388-91
این پژوهش در راستای یک طرح تحقیقاتی در سواحل جنوبی خزر از سال 91-88 انجام شد. نمونه برداری از ماهیان در راستای طرح کنوانسیون بین المللی حفاظت از گونه های در معرض خطر در جهت تکثیر مصنوعی صورت گرفته که مولدین این ماهیان بعد از صید به وسیله صیادان اداری مستقر در صیدگاه ها به کارگاه شهید مرجانی انتقال یافتند. در مجموع تعداد 742 قطعه ماهی مورد مطالعه قرار گرفت که از این مجموع 416 قطعه ماده و تعداد 326 قطعه ماهی نر صید شد. در کل 17659 کیلوگرم گوشت و 2060/56 کیلوگرم خاویار به دست آمد. بیش ترین فراوانی گونه قره برون در سال 88 با 35/12 درصد و کم ترین درصد فراوانی در سال 91 با 20/17 درصد بود. نتایج نشان داد دامنه طول چنگالی تاس ماهی ایرانی 218-50 سانتی متر در سال های 1388 الی 1391 بود. متوسط طول چنگالی تاس ماهی ایرانی صید شده در حاشیه جنوبی دریای خزر از 68/18±153 سانتی متر در سال 1388 با یک روند نزولی به 1/20±123/4 سانتی متر کاهش در سال 1391 رسید. حداقل و حداکثر طول چنگالی به ترتیب با 123/44 سانتی متر و 154/35 و با میانگین (انحراف معیار) 18/8± سانتی متر و حداقل و حداکثر وزن به ترتیب با 41 و 75 کیلوگرم و با میانگین انحراف معیار 9/27± کیلوگرم بود. نسبت جنسی نر به ماده 1 به 1/3 و ماده های رسیده در مرحله 4 رسیدگی جنسی بودند و در طول چهار سال در استان گلستان مجموعا 2060/56 کیلوگرم خاویار استحصال شد و از 699/92 کیلوگرم در سال 88 به 379/59 کیلوگرم کاهش در سال 91 رسید و در سال 88 بیش از 78/51 درصد آن دان 1 و 16/29 درصد آن دان 2 و 5/18 درصد آن دان 3 و 0/8 درصد آن از نوع خاویار فشرده بودند. اما در سال 91 بیش از 66/66 درصد آن دان 1 و 23/8 درصد آن دان 2 و 9/52 درصد آن دان 3 و فاقد دان فشرده بودند. میزان صید در واحد تلاش از 0/224 کیلوگرم در سال 88 به 0/204 کیلوگرم کاهش در سال 91 رسید.
http://www.aejournal.ir/article_102598_0e990cfccf2425f32827dbd826b1387c.pdf
2019-12-22
163
170
تاس ماهی ایرانی
زیست شناسی دریای خزر
طول چنگالی
گوشت وخاویار
جنسیت
دان
صید در واحد تلاش
محمد
لاریجانی
mohamadlarijani@gmail.com
1
مرکزتحقیقات ذخایر آبزیان آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
غلامعلی
بندانی
bandani12@yahoo.com
2
مرکزتحقیقات ذخایر آبزیان آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، گرگان، ایران
AUTHOR
محمد رضا
خوش قلب
khoshghalb@gmail.com
3
موسسه تحقیقات بین المللی تاسماهیان دریای خزر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
سید احسان
خوشقلب
hosseini.ehsan@gmail.com
4
مرکز امور ماهیان خاویاری جزیره آشوراده، آشوراده، ایران
AUTHOR
طیبه
عنایت غلام پور
t.enayat111@gmail.com
5
گروه شیلات، دانشگاه پیام نور ، صندوق پستی 3697-19395، تهران، ایران
AUTHOR
امیری، ک.؛ بانی، ن.؛ علیجانپور، ن.؛ بساط نیا، ن. و هادیفر، ع.، 1393. تأثیر عوامل محیطی بر مقدار صید در واحد تلاش صیادی و پراکنش کیلکا (Pisces: Clupeidae) در جنوب غربی دریای خزر (بندر انزلی). مجله بوم شناسی آبزیان. سال 4، شماره 3، صفحات 98 تا 102.
1
بهروزخوش قلب، م.ر.، 1387 .وضعیت صید و بهره برداری از ماهیان خاویاری انستیتو تحقیقات بین المللی ماهیان خاویاری دکتر دادمان. 49 صفحه.
2
بهروزخوش قلب، م.ر. 1383. گزارش سفر به کشور روسیه جهت شرکت در گشت تحقیقاتی ارزیابی ذخایرماهیان خاویاری در دریای خزر (تابستان1383). انستیتو تحقیقات بین المللی ماهیان خاویاری دکتر دادمان. 24 صفحه.
3
پورکاظمی، م.، 1387 .منابع زنده دریای خزرو کنوانسیون محیط زیست. دو فصلنامه مطالعات اوراسیای مرکزی. سال 1، شماره 1، صفحات 1 تا 2.
4
پورکاظمی، م.، 1389 .تحلیلی بر وضعیت ذخایر ماهیان خاویاری و تولید خاویاری و تولید خاویار کشور (عملکرد، چالش ها و برنامه ها). 18 صفحه.
5
پیغمبری، س.ی.؛ دلیری، م. و کیاالوندی، س.، 1392. تعیین ترکیب صید تورهای پره ساحلی در جنوب شرقی دریای خزر (مطالعه موردی سواحل غربی استان گلستان). مجله بوم شناسی آبزیان. سال 2، شماره 4، صفحات 18 تا 28.
6
توکلی، م.؛ پرافکنده حقیقی، ف.؛ بهروزخوش قلب، م.ر.؛ کیمرام، ف. و تقوی، ا.، 1389. ارزیابی ذخایر تاس ماهی ایرانی در حوضه جنوبی دریای خزر طی سال های 88-78 13. مجله علمی شیلات ایران. سال 19، شماره 1، صفحات 1 تا 8.
7
توکلی، م.؛ بهروزخوش قلب، م.ر.؛ کرد، د.؛ جوشیده، ه.؛ کیمرام، ف. و بهمنی، م.، 1386. ارزیابی ذخایر ماهیان خاویاری در حوضه جنوب دریای خزر (آب های ایران). موسسه تحقیقات شیلات ایران. 136 صفحه.
8
مقیم، م. و بهروزخوش قلب، م.ر.، 1381. گزارش سفر به روسیه وگشت ارزیابی ذخایرماهیان خاویاری در حوضه جنوبی دریای خزر (گشت بهار 1381). موسسه تحقیقات شیلات ایران. 11 صفحه.
9
مقیم، م.؛ پرافکنده، ف.؛ توکلی، م. بهروزخوش قلب، م.، 1383 .بررسی آماری و بیولوژیکی ماهیان خاویاری 82-1380. موسسه تحقیات شیلات ایران. 57 صفحه.
10
مقیم، م.؛ فضلی، ح .؛ غنی نژاد، د.؛ توکلی، م.؛ بهروزخوش قلب، م.ر.؛ عقیلی نژاد، ک.؛ فدائی، ب. و پرافکنده، ف.، 1384 . بررسی آماری و بیولوژیکی ماهیان خاویاری سواحل جنوبی دریای خزر در سال های 1378-1376. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 115 صفحه.
11
Artyukhin, E.N., 1979. Persian sturgeon in the rivers of the North Caspian and prospects of its exploitation in sturgeon economy. In: "Biological bases for development of sturgeon economy in water bodies of USSR. pp: 105-114.
12
Gessner, M.; Swan, C.M.; Dang, C.K.; McKie, B.G.; Bardgett, R.D.; Wall, D.H. and Hättenschwiler, S., 2010. Diversity Meets Decomposition. Tends in Ecology and Evolution. Vol. 25, pp: 372-380.
13
Holcik, J., 1989. The freshwater fishes of Europe.General international to fishes Acipenseriformes Aula verlay Wiesbaden. Vol. 1-2, pp: 18-56.
14
Puertas, P. and Bodmer, R.E., 2004. Hunting effort as a tool for community-based wildlife management in Amazonia. In: Silvius, K.M.; Bodmer, R.E. and Fragoso, J.M.V., eds. People in Nature: wildlife conservation in south and Central America. Columbia University Press, New York. pp: 123-135. ISBN 978-0231127837.
15
Sparre, P. and Venema, S.C., 1998. Introduction to tropical fish stock assessment. Part 1. Manual. FAO Fisheries Technical Paper. (306.1, Rev. 2). 407 p.
16
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر محرک ایمنی ماکروگارد و جلبک اسپیرولینا (Arthrospira platensis) بر برخی فراسنجههای خونی ماهی ازون برون (Acipenser stellatus)
اثرات محرک ایمنی ماکروگارد و اسپیرولینا بر برخی پارامترهای خونی ماهی ازون برون جوان در این مطالعه مورد سنجش قرار گرفت. این تحقیق با استفاده از یک طرح کاملاً تصادفی با 5 تیمار و 3 تکرار، شامل تیمار شاهد (M0S0) که واجد جیره غذایی پایه بدون افزودنی، جیره پایه مکمل شده با 0/1 درصد ماکروگارد (M1S0)، جیره پایه مکمل شده با 0/1 درصد پودر اسپیرولینا (M0S1)، جیره پایه مکمل شده با 0/1 درصد ماکروگارد به همراه 0/1 درصد پودر اسپیرولینا (M1S1) و جیره پایه مکمل شده با 0/5 درصد ماکروگارد به همراه 0/5 درصد پودر اسپیرولینا (M5S5) طراحی شد. تعداد 700 عدد ماهیان ازون برون (وزن متوسط 1/06±87/56 گرم) به مدت 12 هفته با جیرههای آزمایشی تغذیه شد. در انتهای آزمایش، تعداد گلبولهای سفید (WBC)، تعداد گلبولهای قرمز (RBC)، هماتوکریت (HCT)، میزان رسوب گلبولهای قرمز (ESR) و شمارش افتراقی گلبولهای سفید مورد سنجش قرارگرفت. حداکثر مقادیر WBC و HCT در تیمار M5S5 بود، درحالیکه حداقل مقدار ESR در این تیمار مشاهده شد (0/05>p). میزان شاخص RBC در تیمار M5S5 نسبت به تیمار شاهد افزایش یافت. حداکثر مقدار جمعیت لنفوسیتی (2/10±75/08 درصد) در تیمار M5S5 مشاهده شد و حداکثر مقدار نوتروفیلها در تیمارهای M5S5 و M1S1 مشاهده شد (0/05<p). بنابراین، استفاده توأم از ماکروگارد و اسپیرولینا هرکدام در سطح 0/5 درصد در جیره غذایی ماهی ازون برون بهطور معنیداری سبب بهبود شاخصهای خونی، جمعیت لنفوسیتها و نوتروفیلها میگردد.
http://www.aejournal.ir/article_102615_4693d5117c0e4a718d148e89acc48d1c.pdf
2019-12-22
171
176
ازون برون
ماکروگارد
اسپیرولینا
شاخصهای خونی
عمار
صالحی فارسانی
ammar_1631@yahoo.com
1
گروه شیلات، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
مهدی
سلطانی
msoltani@ut.ac.ir
2
گروه بهداشت و بیماریهای آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
ابولقاسم
کمالی
kamali.abolghasem@gmail.com
3
گروه شیلات، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
مهدی
شمسایی مهرجان
drshamsaie@gmail.com
4
گروه شیلات، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
بیرانوند، م.؛ قائنی، م. و ولایت زاده، م.، 1394. تأثیر مکمل جلبک اسپیرولینا (.Spirulina sp) بر رشد و تغذیۀ ماهی زبرا دانیو (Danio rerio). یافتههای نوین در علوم زیستی. دوره 2، شماره 3، صفحات 207 تا 215.
1
سلطانی، م.؛ امامی، ع.؛ طاهری میرقائد، ع.؛ مغانی قهرمانلو، م. و شهبازی، م.، 1396. تأثیر محرک ایمنی ماکروگارد برکارایی واکسن دوگانه لاکتوکوکوزیس/استرپتوکوکوزیس در بچه ماهیان قزل آلای رنگینکمان. نشریه توسعه آبزی پروری. دوره 11، شماره 2، صفحات ۶۱ تا ۶۷.
2
یزدی، م.؛ سلطانی، م.؛ میرزایی، ر. و رجبی اسلامی، ه.، 1393. اثر بتاگلوکان (ماکروگارد) بر برخی از شاخص های ایمنی ماهی اسکار (Astronotus ocellatus). دوره 9، شماره 3، صفحات 87 تا 92.
3
Abdel-Tawwab, M.; Abdel-Rahman, A.M. and Ismael, N.E., 2008. Evaluation of commercial live bakers’ yeast, Saccharomyces cerevisiae as a growth and immunity promoter for Fry Nile tilapia, Oreochromis niloticus (L.) challenged in situ with Aeromonas hydrophila. Aquaculture. Vol. 280, No. 1-4, pp: 185-189.
4
Adel, M.; Yeganeh, S.; Dadar, M.; Sakai, M. and Dawood, M.A., 2016. Effects of dietary Spirulina platensis on growth performance, humoral and mucosal immune responses and disease resistance in juvenile great sturgeon (Huso huso Linnaeus, 1754). Fish & Shellfish Immunology. Vol. 56, pp: 436-444.
5
Ai, Q.; Mai, K.; Zhang, L.; Tan, B.; Zhang, W.; Xu, W. and Li, H., 2007. Effects of dietary β-1, 3 glucan on innate immune response of large yellow croaker, Pseudosciaena crocea. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 22, No.4, pp: 394-402.
6
Aramli, M.S.; Kamangar, B. and Nazari, R.M., 2015. Effects of dietary β-glucan on the growth and innate immune response of juvenile Persian sturgeon, Acipenser persicus. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 47, No. 1, pp: 606-610.
7
Badzohreh, G.R.; Soltani, M.; Hoseini, G.R.S. and Bahabadi, M.N., 2012. Effects of β-glucan on the growth, survival, and the efficacy of anti-Streptococcus iniae vaccine in rainbow trout (Onchorhynchus mykiss). Journal of Veterinary Research. Vol. 67, No. 1, pp: 11-17.
8
Bagni, M.; Romano, N.; Finoia, M.G.; Abelli, L.; Scapigliati, G.; Tiscar, P.G. and Marino, G., 2005. Short and long-term effects of a dietary yeast β-glucan (Macrogard) and alginic acid (Ergosan) preparation on immune response in sea bass (Dicentrarchus labrax). Fish & Shellfish Immunology. Vol. 18, No. 4, pp: 311-325.
9
Bronzi, P.; Rosenthal, H.; Arlati, G. and Williot, P., 1999. A brief overview on the status and prospects of sturgeon farming in Western and Central Europe. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 15, No. 4‐5, pp: 224-227.
10
Cardiff, R.D.; Miller, C.H. and Munn, R.J., 2014. Manual hematoxylin and eosin staining of mouse tissue sections. Cold Spring Harbor protocols. Vol. 6, pp: 655-658.
11
Douxfils, J.; Fierro-Castro, C.; Mandiki, S.N.M.; Emile, W.; Tort, L. and Kestemont, P., 2017. Dietary β-glucans differentially modulate immune and stress-related gene expression in lymphoid organs from healthy and Aeromonas hydrophila-infected rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish & Shellfish Immunology. Vol. 63, pp: 285-296.
12
Entezar-yazdi, M.; Soltani, M.; Mirzaie, R. and Rajabi Islami, H., 2014. Effect of β-glucan (Macrogard) on immune parameters of Oscar (Astronotus ocellatus). Journal of Fisheries Science and Technology. Vol. 3, No. 2, pp: 90-96.
13
Falco, A.; Frost, P.; Miest, J.; Pionnier, N.; Irnazarow, I. and Hoole, D., 2012. Reduced inflammatory response to Aeromonas salmonicida infection in common carp (Cyprinus carpio L.) fed with β-glucan supplements. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 32, No. 6, pp: 1051-1057.
14
John, P.J., 2007. Alteration of certain blood parameters of freshwater teleost Mystus vittatus after chronic exposure to Metasystox and Sevin. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 33, pp: 15-20.
15
Kim, S.S.; Rahimnejad, S.; Kim, K.W. and Lee, K.J., 2013. Partial replacement of fish meal with Spirulina pacifica in diets for parrot fish (Oplegnathus fasciatus). Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vo. 13, No. 2, pp: 197-204.
16
Klontz, G.W., 1994. Fish hematology. In: Techniques in fish immunology. Stolen, J.S.; Flecher, T.C.; Rowely, A.F.; Zelikoff, T.C.; Kaattari, S.L. and Smith, S.A., (eds), SOS Publications, USA, ISBN: 0962550582, Vol. 2, pp: 121-132.
17
McCarthy, D.H.; Stevenson, J.P. and Roberts, M.S., 1973. Some blood parameters of the rainbow trout (Salmo gairdneri) I. The Kamloops variety. Journal of fish Biology. Vol. 5, No. 1, pp: 1-8.
18
Meena, D.K.; Das, P.; Kumar, S.; Mandal, S.C.; Prusty, A.K.; Singh, S.K. and Mukherjee, S.C., 2013. Beta-glucan: an ideal immunostimulant in aquaculture (a review). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 39, No. 3, pp: 431-457.
19
Palmegiano, G.B.; Agradi, E.; Forneris, G.; Gai, F.; Gasco, L.; Rigamonti, E. and Zoccarato, I., 2005. Spirulina as a nutrient source in diets for growing sturgeon (Acipenser baeri). Aquaculture Research. Vol. 36, No. 2, pp: 188-195.
20
Peddie, S.; Zou, J. and Secombes, C.J., 2002. Immunostimulation in the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) following intraperitoneal administration of Ergosan. Veterinary Immunology and Immunophatology. Vol. 86, pp: 101-13.
21
Pionnier, N.; Falco, A.; Miest, J.J.; Shrive, A.K. and Hoole, D., 2014. Feeding common carp Cyprinus carpio with β-glucan supplemented diet stimulates C-reactive protein and complement immune acute phase responses following PAMPs injection. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 39, No. 2, pp: 285-295.
22
Pionnier, N.; Falco, A.; Miest, J.; Frost, P.; Irnazarow, I.; Shrive, A. and Hoole, D., 2013. Dietary β-glucan stimulate complement and C-reactive protein acute phase responses in common carp (Cyprinus carpio) during an Aeromonas salmonicida infection. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 34, No. 3, pp: 819-831.
23
Pourkazemi, M., 2006. Caspian Sea sturgeon conservation and fisheries: past present and future. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, No. 1, pp: 12-16.
24
Promya, J. and Chitmanat, C., 2011. The effects of Spirulina platensis and Cladophora algae on the growth performance, meat quality and immunity stimulating capacity of the African sharptooth catfish (Clarias gariepinus). International Journal of agriculture and Biology. Vol. 13, No. 1, pp: 77-82.
25
Ragap, H.M.; Khalil, R.H. and Mutawie, H.H., 2012. Immunostimulant effects of dietary Spirulina platensis on tilapia Oreochromis niloticus. Journal of Applied Pharmaceutical Science. Vol. 2, No. 2, pp: 26-31.
26
Roy, S.S. and Pal, R., 2015. Microalgae in aquaculture: a review with special references to nutritional value and fish dietetics. In Proceedings of the Zoological Society.Vol. 68, No. 1, pp: 1-8.
27
Russo, R.; Mitchell, H. and Yanong, R.P., 2006. Characterization of Streptococcus iniae isolated from ornamental cyprinid fishes and development of challenge models. Aquaculture. Vol. 256, No. 1-4, pp: 105-110.
28
Shahsavani, D.; Mohri, M. and Kanani, H.G., 2010. Determination of normal values of some blood serum enzymes in Acipenser stellatus Pallas. Fish Physiology and Biochemistry. Vo. 36, No. 1, pp: 39-43.
29
Siwicki, A.K.; Anderson, D.P. and Rumsey, G.L., 1994. Dietary intake of immunostimulants by rainbow trout affects non-specific immunity and protection against furunculosis. Veterinary Immunology and Immunopathology. Vol. 41, No. 1-2, pp: 125-139.
30
Soltani, M.; Lymbery, A.; Song, S.K. and Hosseini Shekarabi, P., 2018. Adjuvant effects of medicinal herbs and probiotics for fish vaccines. Reviews in Aquaculture. https://doi: doi.org/10.1111/raq.12295.
31
Song, S.K.; Beck, B.R.; Kim, D.; Park, J.; Kim, J.; Kim, H.D. and Ringø, E., 2014. Prebiotics as immunostimulants in aquaculture: a review. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 40, No. 1, pp: 40-48.
32
Stet, R.J.; Kruiswijk, C.P. and Dixon, B., 2003. Major histocompatibility lineages and immune gene function in teleost fishes: the road not taken. Critical Reviews in Immunology. Vol. 23, No. 5-6, pp: 441-471.
33
Talpur, A.D.; Munir, M.B.; Mary, A. and Hashim, R., 2014. Dietary probiotics and prebiotics improved food acceptability, growth performance, haematology and immunological parameters and disease resistance against Aeromonas hydrophila in snakehead (Channa striata) fingerlings. Aquaculture. Vol. 426, pp: 14-20.
34
Varadarajan, R.; Sankar, H.S.; Jose, J. and Philip, B., 2014. Sublethal effects of phenolic compounds on biochemical, histological and ionoregulatory parameters in a tropical teleost fish Oreochromis mossambicus (Peters). International Journal of Scientific and Research Publication. Vol. 4, No. 3, pp: 2250-3153.
35
Watanuki, H.; Ota, K.; Tassakka, A.C.; Kato, T. and Sakai, M., 2006. Immunostimulant effects of dietary Spirulina platensis on carp, Cyprinus carpio. Aquaculture. Vol. 258, No. 1-4, pp: 157-163.
36
ORIGINAL_ARTICLE
عملکرد مکمل فیتاز بر جایگزینی پودر ماهی با آرد سویا بر شاخص های رشد و برخی پارامترهای خونی و بیوشیمیایی سرم خون ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspius)
جهت تعیین اثر آنزیم فیتاز و جایگزینی پودرماهی با آرد سویا بر روند رشد، و برخیپارامترهای خونی و بیوشیمیایی سرم خون ماهی آزاد دریایخزر با میانگین وزن 13/7±140/6 گرم، هفت جیره با نیتروژن و انرژی یکسان، حاوی سطوح مختلف آرد سویا (40 و 8٠ درصد) برای جایگزینی تدریجی با پودرماهی (جیره شاهد بدون آنزیم فیتاز)، هریک با سه سطح آنزیم فیتاز (صفر و 1000 و 2000 واحد بین المللی بر کیلوگرم) تهیه و مورد تغذیه ماهیان در شرایط یکسان پرورشی قرار گرفت. در پایان دوره 12 هفته ای تغذیه با جیره های آزمایشی، جایگزینی تدریجی پودر ماهی با آرد سویا موجب کاهش معنی داری در روند رشد و کارایی غذا ماهیان گردید (0/05>P). در صورتی که افزودن آنزیم فیتاز موجب افزایش معنی داری در روند رشد و کارایی غذا شد و بهترین نتیجه در استفاده از 2000 واحد بین المللی بر کیلوگرم غذا، به دست آمد. از طرف دیگر شاخص های خونی و سرم شناسی ماهیان نیز تحت تاثیر جیره های غذایی قرار گرفت. مقادیر آنزیم های کبدی با مقادیر متوسط کنجاله سویای جیره غذایی ارتباط مستقیم داشت، به طوری که بالاترین مقادیر آنزیم های آلکالین فسفاتاز، آلانین آمینوترانسفراز و آسپارتات آمینوترانسفراز در ماهیان تغذیه شده با جیره بالای درصد آرد سویا مشاهده شد. با توجه به نتایج حاصل از این تحقیق پیشنهاد می شود که در جیره ماهی آزاد دریای خزر تا سطح 40 درصد پروتئین پودر ماهی با آرد سویا با 2000 واحد بین الملل آنزیم فیتاز بر کیلوگرم غذا جایگزین شود.
http://www.aejournal.ir/article_102640_ac2000da3d8be7b75306f1d1f86477fc.pdf
2019-12-22
177
186
ماهی آزاد دریای خزر
آنزیم فیتاز
شاخص های خونی
کارایی غذا
شاخص های رشد
محمدرضا
ایمانپور
mrimanpoor@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
محمود
محسنی
mahmoudmohseni73@gmail.com
2
مرکز تحقیقات ماهیان سردآبی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تنکابن، ایران
AUTHOR
مصطفی
کرمی نسب
mostafakaraminasab_shilat@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
Barnes, E.; Michael, B.L.; Michael, K.A. and Rosentrater, J.R.S., 2012. An initial investigation replacing fish meal with a commercial fermented soybean meal product in the diets of juvenile rainbow trout. Open Journal of Animal Sciences. Vol. 2, No. 4, pp: 234-243.
1
Burr, G.S.; William, R.W.; Frederic, T.B. and Ronald, W.H., 2012. Replacing fishmeal with blends of alternative proteins on growth performance of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss), and early or late stage juvenile Atlantic salmon (Salmo salar). Journal of aquaculture. Vol. 334, pp: 110-116.
2
Barrows, F.T.; Gaylord, T.G.; Sealey, W.M.; Haas, M.J. and Stroup, R.L., 2008. Processing soybean meal for biodiesel production: effect of a new processing method on growth performance of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Aquaculture. Vol. 283, pp: 141-147. doi:10.1016/j. aquaculture. 2008.06.041.
3
Biswas, M.D.; Borgeson, T.L. and Thiessen, D.L., 2007. A review of processing of feed ingredients to enhance diet digestibility in finfish. Animal Feed Science Technology. Vol. 138, pp: 118-136.
4
Cheryan, M., 1980. Phytic acid interactions in food systems. Critical Reviews on Food Science and Nutrition. Vol. 13, pp: 297-335.
5
Coloso, R.M.K.; King, J.W.; Fletcher, M.A.; hendrix, M.; Subramanyam, P.W. and Ferraris, R.P., 2003. Phosphorus utilization in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fed practical diets and its consequences on effluent phosphorus levels. Aquaculture. Vol. 220, pp: 801-820.
6
Cruz Castro, C.A.; Hernández, L.H.; Fernández Araiza, M.A.; Ramírez Pérez, T. and Ángeles López, O., 2011. Effects of diets with soybean meal on the growth, digestibility, Phosphorus and Nitrogen excretion of juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Hidrobiológica. Vol. 21, No. 2, pp: 118-125.
7
Day, O.J. and Plasencia Gonzaalez, H.G., 2006. Soybean protein concentrate as a protein sourcefor turbot Scophthalmus maximus L. Aquaculture Nutrition 2000. Vol. 6, pp: 221-228.
8
Dalsgaard, J.; Ekman K.S.; Pedersen, P.B. and Verlhac, V., 2009. Effect of supplemented fungal phytase on performance and phosphorus availability by phosphorus-depleted juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss), and on the magnitude and composition of phosphorus waste output. Aquaculture. Vol. 286, pp: 105-112.
9
Domezain, A.E.; Martínez-Álvarez, R.M.; Hidalgo, M.C.; Morales, A.; García Gallego, M. and Sanz, A., 2002. Physiological changes of sturgeon Acipenser naccarii caused by increasing environmental salinity. J Exp Biol. Vol. 205, pp: 3699-3706.
10
Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO). 2008. Cultured Aquatic Species Information Programmed. Oncorhynchus mykiss. Cultured Aquatic Species Information Programmed. Text by Cowx, I. G. In: FAO Fisheries and Aquaculture Department [online]. Rome. Updated 15 June 2005. [Cited 1 August 2013]. http://www.fao.org/fishery/ culturedspecies/ Oncorhynchus mykiss/en.
11
Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO). 2010. World Agriculture Towards 2030/2050:
12
The 2012 revision. ESA E Working Paper No. 12-03. http://www. fao.org/economic/esa/esag/en/.
13
Francis, H.; Adem, H.; Tressel, R.P.; Wysujack, K., Koops, U. and Schulz, C., 2001. Replacement of fish meal with rapeseed protein concentrate in diets fed to common carp (Cyprinus carpio L.). Israeli Journal Aquaculture Bamidgeh. Vol. 63, No. 6. IIC: 63.2011.605.
14
García-Carreño, FL., Haard NF., 1993. Characterization of proteinase classes in Langostilla Pleuroncodes planipes and Crayfish Pacifastacus astacus extracts. Journal of Food Biochemistry 17, 97-113.
15
Gatlin, D.M.; Barrows, F.T.; Brown, P.; Dabrowski, K.; Gaylord, T.G.; Hardy, R.W.; Herman, E., Hu, G.; Krogdahl, Å.; Nelson, R.; Overturf, K.; Rust, M.; Sealey, W.; Skonberg, D.; Souza, E.J.; Stone, D., Wilson, R. and Wurtele, E., 2007. Expanding the utilization of sustainable plant products in aquafeeds: a review. Aquaculture Research. Vol. 38, pp: 551-579.
16
Hard, B.F.; Zinkl, J.G. and Jane, N.C., 2009. Schalm’s Veterinary Hematology.5th ed. Lippincott Williams and Wilkins. pp: 1120-1124.
17
Hernandez, A.; Alex, H.G. and Bari, R.W., 2012. Rainbow trout, (Oncorhynchus mykiss). In: Webster, C.D. & C. E. Lim (Eds.).Nutrient requirements and feeding of finfish for aquaculture. CABI Publishing, New York, New York, USA. pp: 184-202.
18
Iwashita, Y.; Yamamoto, T.; Furuita, H., Sugita, T. and Suzuki, N., 2008. Influence of certain soybean anti nutritional factors supplemented toa casein-based semi purified diet on intestinal and liver morphology in fingerling rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Fisheries Science.
19
Vol. 74, pp: 1075-1082. doi:10.1111/j.1444-2906.2008. x 01627.
20
Jalili, R.; Noori, F. and Agh, N., 2012. Effects of Dietary Protein Source on Growth Performance, Feed Utilization and Digestive Enzyme Activity in Rainbow Trout (Oncorhynchus Mykiss). Journal of Applied Biological Sciences. Vol. 6, No. 3, pp: 61-68.
21
Jidan, Y.; Xianghe, L.;Zijia, W. and Kun, W., 2011. Effect of partial fish meal replacement by soybean meal on the growth performance and biochemical indices of juvenile Japanese flounder Paralichthys olivaceus. Vol. 1, pp: 143-153.
22
Krogdahl, Å.; Penn, M.; Thorsen, J.; Refstie, S. and Bakke, A.M., 2010. Important anti-nutrients in plant feedstuffs for aquaculture: an update on recent finding regarding responses in salmonids. Aquaculture Research. Vol. 41, pp: 333-344.
23
Kraugerud, O.F.; Penn, M.; Storebakken, T.; Refstie, S.; Krogdahl, Å. and Svihus, B., 2007. Nutrient digestibilities and gut function in Atlantic salmon (Salmo salar) fed diets with cellulose or non-starch polysaccharides from soy. Aquaculture. Vol. 273, pp: 96-107.
24
Lovell, R.T., 1988. Use of soybean products in diets for aquaculture species: revised. Soybean Utilisation Alternatives, February 16±18. The Centre for Alternative Crops and Products, University of 14 Minnesota. pp: 335-361.
25
Mohseni, M.; Hassani, M.H.; Pourali, M.; Pourkazemi, M. and Bai, S.C., 2011. The optimum dietary carbohydrate lipid ratio can spare protein in growing beluga, Huso huso. Applied Ichthyology. Vol. 27, pp: 775-780.
26
Mohseni, M.; Pourali, H.R., Kazemi, R. and Bai, S.C., 2014. Evaluation of the optimum dietary protein level for the maximum growth of juvenile beluga (Huso huso L. 1758). Aquaculture Research. Vol. 45, pp: 1832-1841.
27
Palmegiano, G.B.; Dapra, F.; Forneris, G., Gai, F.; Gasco, L.; Guo, K.; Peiretti, P.G.; Sicuro, B. and Zoccarato, I., 2006. Rice proteins concentrate meal as a potential ingredient in practical diets for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 258, pp: 357-367.
28
Papatrypbon, E. and Soares Jr, J.H., 2001. The effect of phytase on apparent digestibility of four practical plant feedstuffs fed to stripped bass, Marone sexatilis. Aquaculture. Vol. 14, pp: 120-129.
29
Sajjadi, M. and Carter, C.G., 2004. Effect of phytic acid and phytase on feed intake, growth, digestibility and trypsin activity in Atlantic salmon (Salmo salar). Aquaculture Nutrition. Vol. 10, pp: 135-142.
30
Soltan, M.A.; Hanafy, M.A. and Wafa, M.I.A., 2008. Effect of Replacing Fish Meal by a Mixture of Different Plant Protein Sourcesin Nile Tilapia (Oreochromis niloticus L.) Diets. Global Veterinaria. Vol. 2, No. 4, pp: 157-164.
31
Storebakken, T.; Shearer, K.D.; Baeverfjord, G.; Nielsen, B.G.; Asgard, T.; Scott, T.M. and De Laporte, A., 2000. Digestibility of macronutrients, energy and amino acids, absorption of elements and absence of intestinal enteritis in Atlantic salmon, Salmo salar, fed diets with wheat gluten. Aquaculture. Vol. 184, pp: 115-132.
32
Wang, F.; Yang, Y.H.; Han, Z.Z.; Dong, H.W.; yang, C.H. and Zou, Z.Y., 2011. Effects of phytase pretreatment of soybean meal and phytase-sprayed in diets on growth, apparent digestibility coefficient and nutrient excretion of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum). Aquaculture International. Vol. 17, pp: 143-157.
33
Zhou, F.; Song, W.; Shao, Q.; Peng, X.; Xiao, J.; Hua, Y. and Owari, B.N., 2011. Partial replacement of fish meal by fermented soybean meal in diets for Black Sea bream, Acanthopagrus schlegelii, juveniles. Journal of World Aquaculture Society. Vol. 42, pp: 184-197.
34
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه کارایی و ایمنی زایی سه روش تجویز واکسن دوگانه استرپتوکوکوزیس/ لاکتوکوکوزیس در ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
در این تحقیق کارایی و ایمنی زایی تجویز واکسن دو گانه استرپتوکوکوزیس/لاکتوکوکوزیس به سه روش خوراکی، تزریقی و غوطه وری در ماهی قزل آلای رنگین کمان ارزیابی گردید. به این منظور 600 قطعه ماهی قزل آلا (2/1±14گرم) به چهار تیمار، هرتیمار در سه تکرار به صورت زیر تقسیم گردیدند: تیمار واکسن خوراکی که با خوراک حاوی 108 به مدت دو هفته تغذیه گردیدند، تیمار واکسن تزریقی که با 0/1 میلی لیتر از باکترین دو باکتری به میزان 109 به روش داخل صفاقی تزریق گردید و در تیمار غوطه وری ماهی ها به مدت دو دقیقه در سوسپانسیون واکسنی 109 غوطه ور گردیدند و تیمار شاهد بدون تجویز واکسن. ماهی ها به مدت دو ماه تغذیه و نگه داری شدند و در روزهای صفر، 20، 40 و 60 شاخص های ایمنی شامل: عیار آنتی بادی، فعالیت لایزوزیم، کمپلمان و باکتری کشی سرم و نیز میزان پروتئین و گلوبولین سرم بین تیمارها مقایسه گردید. سپس تیمارها با هر دو باکتری به طور جداگانه چالش داده شدند و تلفات بین تیمارها مقایسه گردید. به طورکلی می توان نتیجه گرفت که علی رغم این که تیمار واکسن تزریقی بالاترین میزان کارایی و ایمنی زایی را نشان داد، ولی تجویز خوراکی و غوطه وری نیز باعث ایجاد محافظت نسبی در ماهی قزل آلا گردید و با توجه به ارجحیت های روش غوطه وری و خوراکی نسبت به تزریقی انجام تحقیق در بهبود کارایی این روش ها توصیه می گردد.
http://www.aejournal.ir/article_102642_ada9df3c8c3dae3d798675d1d021e90c.pdf
2019-12-22
187
196
واکسن دوگانه استرپتوکوکوزیس/لاکتوکوکوزیس
روش تجویز
خوراکی
تزریقی
ماهی قزل آلای رنگین کمان
مجتبی
علیشاهی
alishahimoj@gmail.com
1
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
مصطفی
حلیمی
m_halimi82@yahoo.com
2
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
مسعود
قربانپور نجف آبادی
ghorbanpoor2000@yahoo.com
3
گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
احمد
عرفان منش
erfanmanesh@yahoo.com
4
جهاد دانشگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
سلطانی، م.؛ رئیسی، م.؛ گودرزی، م.؛ ممتاز، ح. و مومنی، م.، 1391. تعیین فراوانی لاکتوکوکوس گارویه عامل بیماری لاکتوکوکوزیس در مزارع پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان استان چهارمحال وبختیاری وتعیین توالی 16S rRNAجدایه های حاصله. مجله دامپزشکی ایران. دوره 8، شماره1، صفحات 61 تا 67.
1
علیشاهی، م.؛ سعیدی منش، م.؛ مصباح، م. و محمدیان، ت.، 1395. بررسی اثر نانوکیتوزان بر ایمنی زایی واکسن خوراکی آئروموناس هیدروفیلا در ماهی کپور معمولی. مجله دامپزشکی ایران. دوره 12، شماره 1، صفحات 53 تا 64.
2
کرمی، ا.؛ علیشاهی، م.؛ قربانپور، م.؛ تابنده، م.ر. و محمدیان، ت.، 1396. ارزیابی ایمنی زایی واکسن دوگانه استرپتوکوکوزیس /لاکتوکوکوزیس در ماهی قزل آلای رنگین کمان. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 4، صفحات 199 تا 207.
3
Akhlaghi, M.; Munday, B.L. and Whittington, R.J., 1996. Comparison of passive and active immunization of fish against streptococcosis (enterococcosis). J Fish Dis. Vol. 19, No. 3, pp: 251-258.
4
Alishahi, M. and Buchmann, K., 2006. Temperature-dependent protection against Ichthyophthirius multifiliis following immunisation of rainbow trout using live theronts. Dis Aquat Organ. Vol. 72: pp: 269-273.
5
Alishahi, M.; Ranjbar, M.; Ghorbanpour, M.; Peyghan, R. and Mesbah, M., 2010. Effects of dietary on some specific and nonspecific immunity in the common carp (cyprinus carpio). Int J Vet Res. Vol. 4, pp: 189-195.
6
Altun, S.; Kubilay, A.; Ekici, S.; Didinen, B.I. and Diler, O., 2010. Oral vaccination against lactococcosis in Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) using sodium alginate and poly (lactide-co-glycolide) carrier. Kafkas Univ Vet Fak Derg. Vol. 16, pp: 211-217.
7
Barnes, A.C.; Young, F.M.; Horne, M.T. and Ellis, A.E., 2003. Streptococcus iniae: serological differences, presence of capsule and resistance to immune serum killing. Dis Aquat Organ. Vol. 53, No. 3, pp: 241-247.
8
Bercovier, H.; Ghittino, C. and Eldar, A., 1997. Immunization with bacterial antigens: infections with streptococci and related organisms. Dev Biol Stand. Vol. 90, pp: 153-160.
9
Bromage, E.S.; Thomas, A. and Owens, L., 1999. Streptococcus iniae, a bacterial infection in barramundi Lates calcarifer. Dis Aquat Org. Vol. 36, pp: 177-181.
10
Brudeseth, B.E.; Wiulsrød, R.; Fredriksen, B.N.; Lindmo, K.; Løkling, K.E.; Bordevik, M.; Steine, N.; Klevan, A. and Gravningen, K., 2013. Status and future perspectives of vaccines for industrialised fin-fish farming. Fish Shellfish Immunol. pp: 1-10.
11
Costa, A.A.; Leef, M.J.; Bridle, A.R.; Carson, J. and Nowak, B.F., 2011. Effect of vaccination against yersiniosis on the relative percent survival, bactericidal and lysozyme response of Atlantic salmon, Salmo salar. Aquaculture. Vol. 315, pp: 201-206.
12
Craig, A.; Shoemaker. C.; Benjamin, R.; LaFrentz, R. and Julio, C., 2017. Additive genetic variation in resistance of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) to Streptococcus iniae and S. agalactiae capsular type Ib: Is genetic resistance correlated. Aquaculture. Vol. 468, No. 1, pp: 193-198.
13
Eldar, A. and Ghittino, C., 1999. Lactococcus garvieae and Streptococcus iniae infections in rainbow trout Oncorhynchus mykiss: similar, but different diseases. Dis Aquat Organ. Vol. 36, No. 1, pp: 227-231.
14
Ellis, A.E., 1999. Immunity to bacteria in fish. Fish Shellfish Immunol. Vol. 9, pp: 291-308.
15
Esteve-Gassent, M.D.; Fouz, B. and Amaro, C., 2004b. Efficacy of a bivalent vaccine against diseases caused by Vibrio vulnificus after its administration by four different routes. Fish Shellfish Immunol. Vol. 16, pp: 93-105.
16
Faghani, T.; Azari Takami, Gh.; Kousha, A. and Faghani, S., 2008. Surveying on Alginic Acid and Anti-Streptococcus Vaccine Effects on the Growth Performance, Survival Rate, Hematological Parameters in Rainbow Trout (Oncorhynchos mykiss). J. Zool. Vol. 3 No. 2, pp: 54-58.
17
FAO Yearbook of fisheries and aquaculture statistics 2015. 2017. FAO publication, Rom Italy, www.fao.org/fishery/static/Yearbook/YB2015_CD_Master/index.htm.
18
Feldman, B.; Zinkl, J. and Jain, N., 2000. Schalm, s Veterinary Hematology. 5th Ed., Lippincott. Williams and Wilkins. A Wolterscompany. Philadeia, Baltimore, Naw York, London, Buenos Aires, Hong Kong, Sydney, Tokyo.
19
Firdaus-Nawi, M.; Sabri, M.Y.; Hanan, Y.; Siti-Zahrah, A. and Zamri-Saad, M., 2013. Efficacy of feed-based adjuvant vaccine against Streptococcusagalactiae in Oreochromis sp. in Malaysia. Aquacul Res. Vol. 45, pp: 87-96.
20
Greenway, T.; Byars E. and Elliot, R.B., 2017. Validation of Fermentation and Processing Procedures for the Commercial-Scale Production of a Live, Attenuated Edwardsiella ictaluri Vaccine for Use in Channel Catfish. J Aquat Anim Health. Vol. 29, No. 2, pp: 83-88.
21
Gudding, R.; Lillehaug, A. and Evensen, Y., 2014. Fish Vaccination. Wiley and Sons, Ltd, London, UK.
22
Hatten, F.; Fredriksen, I.; Hordvik, I. and Endresen, C., 2001. Presence of IgM in cutaneous mucus, but not in gut mucus of Atlantic salmon, Salmo salar. Fish Shellfish Immunol. Vol. 11, pp: 257-268.
23
Hoshina, T.; Sano, T. and Morimoto, Y., 1958. A Streptococcus pathogenic to fish. J Tokyo Univ Fish. Vol. 44, No. 5.
24
Huang, H.Y.; Chena, Y.C.; Wanga, P.C.; Tsaia, M.A.; Yeha, S.C.; Liangb, H.J. and Chena, S.C., 2014. Efficacy of a formalin-inactivated vaccine against Streptococcus iniae infection in the farmed grouper Epinephelus coioides by intraperitoneal immunization. Vaccine. pp: 1-7.
25
Klesius, P.H.; Shoemaker, C.A. and Evans, J.J., 2000. Efficacy of single and combined Streptococcus iniae isolate vaccine administered by intraperitoneal and intramuscular routes in tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture. Vol. 188, pp: 237-246.
26
Liaghat, M.; Akhlaghi, M.; Hosseini, A.; Nematollahi, A. and Hosseini, S.M.,2011. Humoral and non-specific immune responses in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) naturally exposed to and immunized with Streptococcus iniae. IJVSM. Vol. 5, pp: 218-224.
27
Nayak, S.K.; Swain, P.; Nanda, P.K.; Dash, S. and Shukla, S., 2008. Effect of endotoxin on the immunity of Indian major carp. Fish Shellfish Immunol. Vol. 24, pp: 394-399.
28
Nulty, S.T.; Klesius, P.H. and Shoemaker, C.A., 2003. Hematological Changes in nile tilapia infected with Streptococcus iniae by nare inoculation. J world aquacult soc. Vol. 34, No. 3, pp: 418-422.
29
Pridgeon, J.W. and Klesius, P.H., 2011. Development and efficacy of a novobiocin-resistant Streptococcus iniae as a novel vaccine in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Vaccine. Vol. 29, No. 35, pp: 5986-5993.
30
Romalde, J.L.; Luzardo-Alvárez, A.; Ravelo, C.; Toranzo, A.E. and Blanco-Méndez, J., 2004. Oral immunization using alginate microparticles as a useful strategy for booster vaccination against fish lactoccocosis. Aquaculture. Vol. 236, No. 1, pp: 119-129.
31
Rombout, J.H.W.; Yang, G. and Kiron, V., 2014. Adaptive immune responses at mucosal surfaces of teleost fish. Fish Shellfish Immunol. Vol. 40, No. 2, pp: 634-643.
32
Sahoo, P.K.; Kumari, J. and Mishra, BK., 2005. Non-specific immune responses in juveniles of Indian major carps. J Appl Ichthyol. Vol. 21, pp: 151-155.
33
Sakai, M.; Otubo, T.; Atsuta, S. and Kobayashi, M., 1993. Enhancement of resistance to bacterial infection in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss, by oral administration of bovine lactoferrin, J Fish Dis. Vol. 16, pp: 239-247.
34
Shoemaker, C.A.; Klesius, P.H.; Drennan, J.D. and Evans, J.J., 2011. Efficacy of a modified live Flavobacterium columnare vaccine in fish. Fish Shellfish Immunol. Vol. 30, pp: 304-308.
35
Smith, P.D., 2002. Oral delivery technologies to develop and implement effective life-long protection strategies. Workshop on Fish Vaccination. Wageningen Institute of Animal Science, Wageningen, The Netherlands. pp: 78-80.
36
Soltani, M.; Mousavi, H.A. and Mirzargar, S., 2009. Status of aquaculture health management in the Islamic Republic of Iran”, 1th international congress on aquatic animal, Islamic Republic of Iran, Tehran. pp: 27-28.
37
Soltani, M.; Jamshidi, S.H. and Sharifpour, I., 2005. Streptococcosis caused by Streptococcus iniae in farmed rainbow trout (O. mykiss) in Iran: biophysical characteristics and pathogenesis. Bulletin of European Association of Fish Pathologists. Vol. 25, pp: 95-107.
38
Soltani, M.; Alishahi, M.; Mirzargar, S. and Nikbakht, G., 2007. Vaccination of rainbow trout against Streptococcusiniae infection: comparison of different routes of administration and different vaccines. IFSRI. Vol. 7, pp: 129-140.
39
Soltani, M.; Pirali Kheirabadi, E.; Taheri Mirghaed, A.; Zargar, A.; Mohamadian, S.; Roohollahi, Sh. and Zakian, M., 2015.Study on Streptococcosis and Lactococcosis Outbreaks in Rainbow Trout Farms in Fars and Lorestan Provinces. Vet Microbiol. Vol. 30, pp: 49-58.
40
Sun, Y.; Liu, C.S. and Sun, L., 2011. A multivalent killed whole-cell vaccine induces effective protection against Edwardsiella tarda and Vibrio anguillarum. Fish and Shellfish Immunol. Vol. 31, pp: 595-599.
41
Thrall,M.A.,2004.Veterinary hematology & clinical chemistry. Lippincott Whiliams & Wilkins. NewYork. 402 p.
42
Vinay, T.N.; Bhat, S.; Gon, T.; Paria, A. and Jung, M.H., 2017. Recent Advances in Application of Nanoparticles in Fish Vaccine Delivery. Rev Fish Sci Aquac. Vol. 1, pp: 29-41.
43
Yang, Q.; Pan, Y.L.; Wang, K.Y.; Wang, Y.; Yang, H.; Wang, E.L.; Liu, T.; Geng, Y.; Chen, D.F. and Huang, X.L., 2016. OmpN, outer membrane proteins of Edwardsiella ictaluri are potential vaccine candidates for channel catfish (Ictalurus punctatus). Mol Immunol. Vol. 78, pp: 1-8.
44
Zhu, L.; Yang, Q.; Huang, H. and Wang, K., 2017. Effectivity of oral recombinant DNA vaccine against Streptococcus agalactiae in Nile tilapia. Dev Comp Immunol. Vol. 77, pp: 77-87.
45
ORIGINAL_ARTICLE
تجویز خوراکی اسانس اسطوخودوس (Lavandula officinalis) بر شاخصهای رشد، خونی و ایمنی ماهی قزلآلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
به منظور بررسی اثر اسانس اسطوخودوس (Lavandula officinalis) بر شاخصهای رشد، فاکتورهای خونی، و ایمنی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)، آزمایشی در قالب طرح بلوکهای کاملاً تصادفی با چهار تیمار در سه تکرار انجام شد. تیمار آزمایشی شامل اسانس اسطوخودوس 0/5، 1 و 2 میلی لیتر در یک کیلوگرم از جیره بود. تیمار شاهد نیز بدون استفاده از اسانس گیاهی و با شرایط یکسان با دیگر تیمارها درنظر گرفته شد. مطابق نتایج، بیش ترین درصد افزایش وزن، طول، ضریب رشد ویژه، درصد بازماندگی و تولید خالص ماهی در تیمارهای 1 و 2 میلیلیتر اسانس در یک کیلوگرم جیره مشاهده شد. ضریب تبدیل غذایی با افزایش مقادیر اسانس، بهطور معنیداری کاهش نشان داد. بالاترین میزان گلبولهای قرمز، گلبولهای سفید، غلظت متوسط هموگلوبین و نوتروفیل مربوط به 2 میلیلیتر اسانس در جیره بود. میزان هموگلوبین، میانگین حجم متوسط گلبولی، هموگلوبین متوسط گلبولی، مونوسیت و ائوزینوفیل تحت تاثیر تیمارهای مختلف اسانس در مقایسه با شاهد قرار نگرفت. نتایج بهدست آمده نشان داد که سیستم ایمنی ماهی قزلآلای رنگینکمان نظیر فعالیت کمپلمان پلاسما، آنزیمهای لیزوزیم، آنزیم سوپراکسید دیسموتاز، ایمونوگلوبولین M سرم خون و ایمنوگلبولین تام سرم با افزایش مقادیر اسانس افزایش یافت. در مجموع افزودن اسانس اسطوخودوس به ویژه 1 و 2 میلیلیتر به جیره ماهی قزل آلای رنگین کمان موجب تاثیر مثبت و معنیدار بر برخی از شاخصهای رشد، فاکتورهای خونی و سیستم ایمنی آنها شد. این امر احتمالاً به دلیل وجود ترکیباتی نظیر فنلها، تاننها و مونوترپنها موجود در اسانس اسطوخودوس میباشد. لذا استفاده از آن بهعنوان مکمل غذایی در جیره پایه پیشنهاد میشود.
http://www.aejournal.ir/article_102836_ff22e0ce2ae48589653c59675ffc5817.pdf
2019-12-22
197
206
اسانس اسطوخودوس
شاخصهای رشد
فاکتورهای خونی و ایمنی
ماهی قزل آلای رنگین کمان
فاطمه
حسنعلیزاده چاری
f.hassanalizadeh@gmail.com
1
گروه شیلات، واحد آزادشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، آزادشهر، ایران
AUTHOR
رضا
اکرمی
eg.alamdari@gmail.com
2
گروه شیلات، واحد آزادشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، آزادشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
افشین
قلیچی
ebrahim_19730@yahoo.com
3
گروه شیلات، واحد آزادشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، آزادشهر، ایران
AUTHOR
پونه
ابراهیمی
eg.alamdari@gonbad.ac.ir
4
گروه شیمی دانشکده علوم پایه دانشگاه گلستان، گرگان، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، ع.؛ تنگستانی، ر.؛ علیزاده دوغی کلایی، ا. و زارع، پ.، 1391. اثر سطوح مختلف اسانس سیر بر شاخصهای رشد، تغذیه و ترکیب شیمیایی لاشه فیل ماهی جوان پرورشی. مجله علوم و فنون دریایی. دوره 11، شماره 4، صفحات 1 تا 12.
1
احمدی فر، ا.؛ جلالی، م.ع.؛ سوداگر، م. و محمدی زرج آباد، ا.، 1388. اثرات آکواک ارگوسان بر میزان رشد، بازماندگی و شاخصهای مربوط به خون در فیل ماهیان جوان. مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی. دوره 16، شماره 1 (ویژه نامه)، صفحات 72 تا 80.
2
تنگستانی، ر.؛ علیزاده، ا. و پرویز، م.، 1390. اثر اسانس گیاه سیر بر شاخص های هماتولوژی فیل ماهی. مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 66، شماره 3، صفحات 209 تا 216.
3
اکرمی، ر.؛ احمدی، ز.؛ شاملوفر، م.؛ حبیبی نوده، ف.، صادقی اصل، ف.؛ زرینی، ن. و چیت ساز، ح.، 1397. تأثیر عصاره زنجبیل بر برخی شاخص های رشد، خون، بیوشیمی و ایمنی ماهی قزل آلای رنگین کمان. مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 73، شماره 2، صفحات 155 تا 163.
4
امیدبیکی، ر.، 1376. تولید و فرآوری گیاهان دارویی. انتشارات به نشر، مشهد. 347 صفحه.
5
رئیسی، م.؛ فخریان، م.؛ جعفریان، م. و ورشویی، ح.، 1393. مطالعه تأثیر اسانس برخی گیاهان بر ایمنی غیراختصاصی ماهی استرلیاد. مجله زیست شناسی دریا. سال 6، شماره 21، صفحات 23 تا 28.
6
سلطان دلال، م.م.؛ بیات، م.؛ یزدی، م.ح.؛ آقامیری، س.؛ قربانزاده مشکاتی، م.؛ پیمانه عابدی محتسب، پ. و شجاعی سعدی، ب.، 1391. ارزیابی اثر ضدمیکروبی اسانس گیاهی آویشن شیرازی بر سویههای استافیلوکوکوس اورئوس مقاوم به آنتی بیوتیک جدا شده از مواد غذایی. مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی کردستان. دوره 17، صفحات 21 تا 29.
7
سلطانی، م.؛ ظریف منش، ط. و ذریه زهرا، س.ج.، 1391. مطالعه تأثیر اسانس آویشن شیرازی بر میزان فعالیت سیستم عامل مکمل و لیزوزیم خون ماهی قزل آلای رنگین کمان. مجله علمی شیلات ایران. سال 21، شماره 4، صفحات 13 تا 23.
8
عبدی، ا. و علیشاهی، م.، 1392. بررسی اثر ماده محرک ایمنی ایمونوفن (اسانس گیاه اکیناسه) بر شاخصهای رشد و ایمنی ماهی قزل آلای رنگین کمان انگشت قد. دومین همایش ملی توسعه و پرورش ماهیان سردآبی، 10 و 11 اردیبهشت 1392، شهرکرد.
9
عزیزی، ا.؛ یگانه، س.؛ فیروزبخش، ف. و جانی خلیلی، خ.، 1395. اثر جیره غذایی حاوی اسانس آویشن بر عملکرد رشد، فراسنجه های خونی و بیوشیمیایی سرم ماهی قزل آلای رنگین کمان. نشریه پژوهشهای ماهی شناسی کاربردی. دوره 4، شماره 2، صفحات 45 تا 61.
10
قاسمی پیربلوطی، ع.، 1388. شناخت گیاهان دارویی و معطر (شناخت و بررسی اثرات آنها). شهرکرد، انتشارات دانشگاه آزاد اسلامی. 500 صفحه.
11
قاسمی پیربلوطی، ع.؛ پیرعلی، ا.؛ پیشکار، غ.ر؛ جلالی، س.م.ع.؛ رئیسی، م.؛ جعفریان دهکردی، م. و حامد، ز.ب.، 1390. اثر اسانس چند گیاه دارویی بر سیستم ایمنی ماهی قزل آلای رنگین کمان. فصلنامه داروهای گیاهی. شماره 2، صفحات 149 تا 155.
12
کندر، ا.؛ سجادی، م.م.؛ سوری نژاد، ا.؛ دریایی، ع.؛ میرزاده، ق. و خادمی، ف.، 1392. تاثیر افزودن مکمل ال کارنیتین به جیره غذایی بر شاخصهای رشد و بازماندگی ماهی صبیتی. مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 3، صفحات 35 تا 45.
13
Amar, E.C.; Kiron, V.; Satoh, S.; Okamoto, N. and Watanabe, T., 2000. Effects of dietary β- carotene on the immune response of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fisheries Science. Vol. 66, pp: 1068-1075.
14
Amar, E.C.; Kiron, V.; Satoh, S. and Watanabe, T., 2004. Enhancement of innate immunity in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) associated with dietary intake of carotenoids from natural products. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 16, pp: 527-537.
15
Applegate, T.J.; Klose, V.; Steiner, T.; Ganner, A. and Schatzmayr, G., 2010. Probiotics and phytogenic for poultry: myth or reality? Journal of Applied Poultry Research. Vol. 19, pp: 194-210.
16
Ardo, L.; Yin, G.; Xu, P.; Varadi, L.; Szigeti, G.; Jeney, Z. and Jeney, G., 2008. Chinese herbs Astragalus membranaceus and Lonicera japonica) and boron enhance the non-specific immune response of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) and resistance against Aeromonas hydrophyla. Aquaculture. Vol. 275, pp: 26-33.
17
Boesen, H.T.; Pedersen, K.; Larsen, J.L.; Koch, C. and Ellis, A.E., 1999. Vibrio anguillarum resistance Trout (Oncorhynchus mykiss) Serum: Role of O-Antigen structure of Lipopolysaccharide. Journal of infection and Immunity. Vol. 67, No. 1, pp: 294- 301.
18
Bradford, M., 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quamtities of protein utilizing the principale of protein– dye binding. Annals of Clinical Biochemistry. Vol. 72, pp: 248-254.
19
Christybapita, D.; Divyagnaneswari, M. and Michael, R. D., 2007. Oral administration of Eclipta alba leaf aqueous extract enhances the non-specific immune responses and disease resistance of Oreochromis mossambicus. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 23, pp: 840–852.
20
Choi, S.H.; Park, K.H.; Yoon, T.J.; Kim, J.B.; Jang, Y.S. and Choe, C.H., 2008. Dietary Korean mistele to enhance cellular non- specific immune responses and survival of Japanese eel (Anguilla japonica). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 24, pp: 67-73.
21
Dadman, B.; Omidbeygi, R. and Sefidkan, F., 2007. Effect of nitrogen on essential oil of Mexican parsley. Iranian Medicinal and Aromatic Plants Research. Vol. 23, No. 4, pp: 484-491.
22
Dixon, B. and Stet, R.J.M., 2001. The relationship between major histocompatibility receptors and innate immunity in teleost fish. Developmental and Comparative Immunology. Vol. 25, pp: 683-700.
23
Feldman, B.F.; Zinkl, J.G. and Jian, N.C., 2000. Schalm’s veterinary hematology. Lippincott Williams and Wilkins publication, Canada. pp: 1120-1125.
24
Giannenas, I.; Triantafillou, E.l.; Stavrakakis, S.; Margaroni, M.; Mavridis, S.; Steiner, T. and Karagouni, E., 2012. Assessment of dietary supplementation with carvacrol or thymol containing feed additives on performance, intestinal microbiota and antioxidant status of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 350, pp: 26-32.
25
Jalali-hajiabadi, M.A.; Sadeghi, A.A.; Mahbobi Sofiyani, N.; Chamani, M. and Riyazi, Gh., 2009. The effect of dietary L-carnitine supplementation on blood factors and growth of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Agriculture Science and Natural resources. Vol. 47, pp: 105-115.
26
Knowles, S.; Hrubec, T.C.; Smith, S.A. and Bakal, R.S., 2006. Hematology and plasma chemistry reference intervals for cultured short nosesturgeon (Acipenser brevirostrum). Veterinary Clinical Pathology. Vol. 35, pp: 434-440.
27
McCord, J.M. and Fridovich, I., 1969. Superoxide dismutase: an enzymic function for erythrocuprein (Hemocuprein). Journal of Biological Chemistry. Vol. 244, No. 6, pp: 6049–6055.
28
Metaxa, E.; Deviller, G.; Pagand, P.; Alliaume, C.; Casellas, C. and Blancheton, J.P., 2006. High rate algal pond treatment for water reuse in a marine fish recirculation: water purification and fish health. Aquaculture. Vol. 252, pp: 92-101.
29
Mohajerfar, T.; Hoseinzadeh, A.; Akhondzadeh-basti, A.; Khanjari, A.; Misaghi, A. and Gandomi nasrabadi, H., 2012. Determination of minimum inhibitory concentration (MIC) of Zataria multiflora Bioss. essential oil and lyzozym on L. monocytogenes. Journal of Medicinal Plants. Vol. 11, pp: 70-78.
30
Ramakrishna Rao, R.R.; Platel, K. and Srinivasan, K., 2003. In vitro influence of spices and spice-active principles on digestive enzymes of rat pancreas and small intestine. Nahrung/Food. Vol. 47, pp: 408-412.
31
Ramsden, S.R.; Smith, T.J.; Shaw, B.J. and Handy, R.D., 2009. Dietary exposure to titanium dioxide nanoparticles in rainbow trout, (Oncorhynchus mykiss): No effect on growth, but subtle biochemical disturbances in the brain. Ecotoxicology. Vol. 18, pp: 939-951.
32
Rao, Y.Y.; Das, B.K.; Iyotymayee, P. and Chakrabarti, R., 2006. Effect of Achyranthes aspera on the immunity and survival of Labeo rohita infected with Aeromonas hydrophila. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 20, pp: 265-273.
33
Sahu, S.; Das, B.K.; Pradhan, J.; Mohapatra, B.C.; Mishra, B.K. and Sarangi, N., 2006. Effect of Magnifera indica kernel as a feed additive on immunity and resistance to Aeromonas hydrophila in Labeo rohita fingerlings. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 23, pp: 109- 118.
34
Sakai, D.K., 1998. Delayed maturation in the colonial coral Gonasteria aspera (Scleractina): wholecolony mortality, colony growth and polyp egg production. Researches on Population Ecology. Vol. 40, pp: 287-292.
35
Swicki, A.K.; Anderson, D.P. and Rumsey, G.L., 1994. Dietry intak of immunostimulants by rainbow trout affects non- specific immunity and protection aganst furunculosis. Veterinary Immunology and Immunopathology. Vol. 14, pp: 125-139.
36
Teimouri, M.; Amir Kolaie, A.S. and Yeganeh, S., 2013. The effects of Spirulina platensis meal as a feed supplement on growth performance and pigmentation of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 14, No. 19, pp: 396-399. doi: org/10.1016/j.aquaculture.2013.02.009.
37
Waley, K. and North, J., 1997. Haemolytic assays for whole complement activity and individual components. In: (Dodds, A.W. and Sim, R.B., eds.), Complement: A Practical Approach, Vol. 1: Oxford University Press, Oxford. Great Britain. pp: 19-47.
38
Zheljazkov, V.D.; Cantrell, C.L.; Astatkie, T. and Jeliazkova, E., 2013. Distillation time effect of lavender essential oil yield and composition. Journal of Oleo Science. Vol. 62, pp: 195-199.
39
Zhou, X.; Li, M.; Abbas, Kh. and Wang, W., 2009. Comparison of haematology and serum biochemistry of cultured and wild Dojo loach (Misgurnus anguillicaudatus). Fish Physiology Biochemistry. Vol. 35, pp: 435-441.
40
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه برخی پارامترهای رشد در پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) در طراحی جدیدی از استخرهای بیضی شکل با جریان دورانی فاستر لوکاس (Foster Locus) و استخرهای دراز
پرورش متـراکم ماهی قزل آلای رنگین کمان به روش های گوناگونی صورت می پذیرد. هدف از اجرای این تحقیق، مقایسه شاخص های رشد و سلامت ماهی در طراحی جدید از استخرهای بیضی شکل با جریان دورانی و استخرهای دراز در شرایط یکسان می باشد. در این تحقیق از هر یک از دو نوع استخر سه نمونه ساخته شد. استخرها با ماهیان قزل آلای رنگین کمان با وزن متوسط 5±40 گرم ماهی دار شدند. تراکم ذخیره سازی 120 قطعه ماهی در مترمکعب درنظر گرفته شد. در طول دوره مطالعه، تغذیه ماهیان با استفاده از غذای تجاری چینه به مدت 10 ماه با درنظر گرفتن دمای آب و وزن ماهی به میزان 1/3 درصد زی توده انجام شد. براساس نتایج، طی دوره آزمایش بازماندگی ماهیان در هر دو سیستم استخرهای فاسترلوکاس و استخرهای دراز و به ترتیب 98/05 و 97/39 بود. هیچ گونه اختلاف معنی داری در پارامترهای رشد بین دو سیستم پرورشی مشاهده نشد (0/05≤P). با این وجود، میزان افزایش رشد در استخرهای بیضی شکل با جریان دورانی اندکی بیشتر از استخرهای دراز بود (0/05≤P). میانگین فاکتورهای کیفی آب از جمله اکسیژن محلول و پی اچ در استخرهای بیضی شکل با جریان دورانی در دامنه مطلوب جهت پرورش ماهی قزل آلا بوده و فاقد تفاوت معنی دار (0/05≤P) با میانگین فاکتورهای مذکور در استخرهای دراز بود. نتایج تاییدکننده این مطلب هستند که در صورت حفظ شرایط کیفی آب در محدوده مناسب، استخرهای بیضی شکل با جریان دورانی میتواند به عنوان جایگزین استخرهای دراز جهت پرورش متراکم ماهی قزل آلای رنگین کمان مورد استفاده قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_103547_a107fd67d43070c57a39828fbd8ba48f.pdf
2019-12-22
207
212
قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
پرورش ماهی
استخر فاستر لوکاس
استخر بیضی شکل با جریان دورانی
استخر دراز
حبیب اله
گندمکار
gandomkar.habib@gmail.com
1
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، مرکز تحقیقات ژنتیک و اصلاح نژاد ماهیان سردآبی شهید مطهری یاسوج، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، یاسوج، ایران
LEAD_AUTHOR
ابوالحسن
راستیان نسب
a.rastian@areeo.ac.ir
2
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، مرکز تحقیقات ژنتیک و اصلاح نژاد ماهیان سردآبی شهید مطهری یاسوج، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، یاسوج، ایران
AUTHOR
جواد
مهدوی جهان آباد
mahdavejavad60@yahoo.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، مرکز تحقیقات ژنتیک و اصلاح نژاد ماهیان سردآبی شهید مطهری یاسوج، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، یاسوج، ایران
AUTHOR
حامد
کریمی
hamedkarimish@gmail.com
4
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، مرکز تحقیقات ژنتیک و اصلاح نژاد ماهیان سردآبی شهید مطهری یاسوج، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، یاسوج، ایران
AUTHOR
بشارت، ا.، 1377. دوره تکمیلی پرورش ماهیان سردابی. انتشارات معاونت تکثیر و پرورش آبزیان شیلات ایران.
1
دفتر برنامه ریزی، گروه آمار و مطالعات توسعه شیلاتی. 1388. سالنامه آماری سازمان شیلات ایران. 56 صفحه.
2
علیزاده، م. و دادگر، ش.، 1380. مدیریت تغذیه در پرورش متراکم آبزیان. نوشته گدارد، ا.، معاونت تکثیر و پرورش آبزیان، اداره کل آموزش و ترویج. 190صفحه.
3
فرزانفر، ع.، 1384. تکثیر و پرورش آزاد ماهیان. مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 170صفحه.
4
Barton, B.A.; Morgan, J.D. and Vijayan, M.M., 2002. Physiological and conditionrelated indicators of environmental stress in fish, in Biological Indicators of Aquatic Ecosystem Stress, edited by Adams, S.M. American Fisheries Society, Bethesd Maryland. pp: 111-148.
5
Bosakowski, T. and Wagner, E.J. 1995. Experimental use of cobble substrates in concrete raceways for improving fin condition of cutthroat (Oncorhynchus clarki) and rainbow trout (O. mykiss). Aquaculture. Vol. 130, pp: 159-165.
6
Colt, J., 2006. Water quality requirements for reuse systems. Aquacultural Engineering. Vol. 34, pp: 143-156.
7
Crab, R.; Avnimelech, Y.; Defoirdt, T.; Bossier, P. and Verstraete, W., 2007. Nitrogen removal techniques in aquaculture for a sustainable production. Aquaculture. Vol. 270, pp: 1-14.
8
D’orbcastel, E.R.; Jean-Paul Blancheton, J.P. and Belaud, A., 2009. Water quality and rainbow trout performance in a Danish Model Farm recirculating system: Comparison with a flow through system. AquaculturalEngineering. Vol. 40, pp: 135-143.
9
FAO Yearbook. 2010. Fishery and Aquaculture Statistics. 2008/FAO annuaire. 72 p.
10
Fishstat plus (Version 2.3). 2004. Statistical report software for fisheries data. FAO.
11
Fivelstad, S.; Olsen, A.B.; Kløften, H.; Ski, H.W. and Stefansson, S., 1999. Effects of carbon dioxide for Atlantic salmon (Salmo salar L.) smolts at constant pH in bicarbonate rich Freshwater. Aquaculture. Vol. 178, pp: 171-187.
12
Fivelstad, S.; Olsen, A.; A˚ sga˚ rd, T.; Bæverfjord, G.; Rasmussen, T.; Vindheim, T. and Stefansson, S.O., 2003. Long-term sub-lethal effects of carbon dioxide on Atlantic salmon smolts: ion regulation, haematology, element composition, nephrocalcinosis and growth parameters. Aquaculture. Vol. 215, pp: 301-319.
13
Kindschi, G.A.; Shaw, H.T. and Bruhn, D.S., 1991. Effects of baffles and isolation on dorsal fin erosion in steelhead trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture and Fisheries Management. Vol. 22, pp: 343-350.
14
Klapsis, A. and Burley, R., 1984. Flow distribution studies in fish rearing tanks. Design Constraints. Aquacultural Engineering. Vol. 3, pp: 103-118.
15
Losordo, T.M. and Westers, H., 1994. System carrying capacity and flow estimation, in Developments in Aquaculture and Fisheries Science, Vol. 27, Aquaculture Reuse Systems: Engineering design and management, edited by Timmons and Losordo, Elsevier, New York. pp: 9-60.
16
Neori, A.; Chopin, T.; Troell, M.; Buschmann, A.H.; Kraemer, G.P.; Halling, C.; Shpigel, M. and Yarish, C., 2004. Integrated aquaculture: rationale, evolution and state of the art emphasizing seaweed biofiltration in modern mariculture. Aquaculture. Vol. 231, pp: 361-391.
17
Pennell, W. and Barton, B.A., 1996. Princiles of salmonid culture. Elsevier. Netherlans. 1039 p.
18
Marcoulii, P.A.; Alexis, M.N.; Andriopoulou, A. and Iliopoulou-Georgudaki, j., 2006. Dietary lysine requirement of juvenile gilthead seabream Sparus aurata L. Aquaculture Nutrition. Vol. 12, No. 1, pp: 25-33.
19
Palmer, D.D.; Newman, H.W.; Azevedo, R.L. and Burrows, R.E., 1952. Comparison of the growth rates of Chinook salmon fingerlings reared in circular tanks and Foster-Lucas ponds. The Progressive Fish-Culturist. Vol. 14, pp: 122-124.
20
Post, G., 1983. Textbook of Fish Health. TFH Publications, Neptune City, New Jersey.
21
Ross, R.M.; Watten, B.J.; Krise, W.F. and DiLauro, M.N., 1995. Influence of tank design and hydraulic loading on the behavior, growth, and metabolism of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture Engineering. Vol. 14, pp: 29-47.
22
Wheaton, F.W., 1977. Aquaculture Engineering. John Wiley and Sons, New York. 708 p.
23
Wood, C.M.; Turner, J.D. and Graham, M.S., 1983. Why do fish die after severe exercise? Journal of Fish Biology. Vol. 22, pp: 189-201.
24
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیرات فیزیولوژیک سم گلایفوزیت (رانداپ) بر بافت آبشش و کبد قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
استفاده از گلایفوزیت جهت کنترل آفات نباتی در بسیاری از مزارع کشاورزی که در مجاورت منابع آب شیرین واقع شده اند بسیار رایج می باشد. از این رو این تحقیق به منظور شناسائی تأثیرات فیزیولوژیک گلایفوزیت که یکی از علف کش های پر مصرف ایران است بر روی ماهی مولد قزل آلا پرداخته شده است. این تحقیق در پاییز 1390 در مرکز تحقیقات علوم شیلاتی و فنون دریایی دکتر کیوان به منظور تعیین تأثیر علف کش گلایفوزیت بر روی برخی از فاکتورهای خونی و بافت ماهی قزل آلا با وزن 200-150 گرم در تحت شرایط کیفی آب ثابت صورت پذیرفت، ماهیان در قالب 4 گروه 30 تایی (سه گروه آزمایشی و یک گروه شاهد با سه تکرار) با غلظت های 5، 10 و 15 (میلی گرم/لیتر) معادل 25، 50 و 75 درصد از Lc5096h مورد استفاده قرار گرفتند. در طول آزمایشات عواملی شامل: pH، سختی، دما و اکسیژن محلول در آب مورد سنجش قرار گرفتند که به ترتیب برابر 7 تا 8/4، 250 میلی گرم در لیتر، 1±22 و اکسیژن بالای ppm 8 اندازه گیری شدند. مدت انجام آزمایش ده روز در نظر گرفته شد و نمونه گیری از گروه ها هر 5 روز یک بار انجام گردید. نتایج حاصله از نظر آسیب شناسی بافتی نیز نشان داد که قرار گرفتن کبد و آبشش در مجاورت سم گلایفوزیت منجر به بروز پدیده هایی مانند پرخونی، آتروفی سلولی، رکورد صفراوی، نکروز، تورم ابری و فضای سینوزوئیدی در کبد و پرخونی، هیپرپلازی، نکروز، چسبندگی رشته های اولیه و ثانویه، چماخی شدن، گرزی شدن، کوتاه شدن تیغه های آبششی ثانویه در بافت آبشش می گردد که با گذشت زمان شدت این علائم افزایش می یابد.
http://www.aejournal.ir/article_103666_7e67a48946ab57c39507d44cb5452a88.pdf
2019-12-22
213
222
علف کش
گلایفوزیت
قزل آلا
بافت شناسی
Lc5096h
فاطمه زهرا
کیانی
fz.kiyani65@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
AUTHOR
مهدی
محمد علیخانی
m.mohammadalikhani1982@gmail.com
2
باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
بهمنی، م. و کاظمی، ر.، 1377. دستورالعمل تهیه و رنگ آمیزی بافت ها برای مطالعات بافت شناسی. انیستیتو تحقیقات بین المللی ماهیان خاویاری دکتر دادمان. 16 صفحه.
1
خانجانی، م. و پورمیرزا، ع.ا.، 1384. سم شناسی. انتشارات دانشگاه بوعلی سینا. چاپ سوم. 440 صفحه.
2
علی نژاد، ر.، 1383. تعیین Lc5096h سموم حشره کش ریجنت، قارچ کش هینوزان و علف کش رانداپ روی دو گونه ماهی خاویاری ازون برون و قره برون. پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات. دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان. صفحات 40 تا 55.
3
فروزانفر، ع.، 1380. روش های نوین در پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان. انتشارات مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 260 صفحه.
4
موسوی، م.ح. و رستگار، م.ع.، 1376. آفت کش ها درکشاورزی. انتشارات دانشگاه آزاد اسلامی واحد ورامین. 300 صفحه.
5
واعظ زاده، و.؛ ماشینچیان مرادی، ع.؛ اسماعیلی ساری، ع. و فاطمی، م،ر.، 1386. بررسی غلظت سموم کشاورزی ارگانوکلره در بافت عضلانی دو ماهی اقتصادی کفال (Liza aurata) و سیاه کولی (Vimba vimba) در سواحل جنوبی دریای خزر. مجله علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 10، شماره 4، صفحات 8 تا 14.
6
وثوقی، غ.ح. و مستجیر، ب.، 1381. ماهیان آب شیرین. انتشارات دانشگاه تهران. چاپ پنجم. 317 صفحه.
7
Charlene, C.; Milene, B.; Vânia, L.; Adriana, S.; Roberta, C.; Bárbara, C.; Alexandra, P. and Vera, M., 2010. Roundup Effects on Oxidative Stress Parameters and Recovery Pattern of Rhamdia quelen.: Archives of Environmental Contamination & Toxicology. Vol. 60, No. 4, pp: 665-671.
8
Dutta, H.M.and Arends, D., 2003. Effects of endosulfan on brain acetylcholinesterase activity in juvenaile bluegill sunfish. Environmental Research. Vol. 91, pp: 157-162.
9
Hued, A.C. and Oberhofer, S., 2012. Exposure to a Commercial Glyphosate Formulation (Roundup) Alters Normal Gill and Liver Histology and Affects Male Sexual Activity of Jenynsia multidentata (Anablepidae, Cyprinodontiformes). Archives of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 62, pp: 107-117.
10
Koprucu, S.S.; Koprucu, K.; Ural, M.S.; Ispir, U. and Pala, M., 2006. Acute toxicity of organophosphorous pesticide diazinon and its effects on behavior and some hematological parameters of fingerling European catfish (silurus glanis L.). Pesticide Biochemistry and Physiology. Vol. 86, pp: 99-105.
11
Khodadadi, M.; Samadi, M.; Rahmani, A.; Maleki, R.; Allahresani, A. and Shahidi, R., 2010. Determination of organophosphorous and carbamat pesticides residue in drinking water resources of Hamadan. Iranian Journal of Health and Environment. Vol. 2, No. 4, pp: 250-57 (in Persian).
12
Poleksic, V. and Karan, V., 1999. Effect of Trifluralin on Carp: Biochemical & Histological Evaluation. Ecotoxicology and Enviromental Safety. Vol. 43, pp: 213-221.
13
Servizi, J.A. and Martens, D.W., 1987. Some effects of suspended fraser river sediments on sockeye salmon (Oncorhynchus nerka). In H.D. Smith, L.M. and Wood, C.C., [ed.] Sockeye salmon (Oncorhynchus nerka) population biology and future management. Can. Spec. Publ. Fish. Aquat. Sci. Vol. 96, pp: 254-264.
14
Sohrabi, T.; Hosseini, A. and Talebi, Kh., 2001. Tailwater Quality Changes in the Rice-Paddies of Guilan and Foumanat. L. Sci. and Tech. Agric. and Nat. Resour. Vol. 5, No. 1, Isf. Univ. Tech. Isf., Iran.
15
Song, S.B.; Xu, Y. and Zhou, B.S., 2006. Effects of hexachlorobenzene on antioxidant of Liver and brain of common carp (Cyprinus carpio). Chemosphere. Vol. 65, pp: 699-706.
16
Sabra, F.S. and Mehana, E.Y., 2015. Pesticides toxicity in fish with particular reference to insecticides. Asian Journal of Agriculture and Food Sciences. Vol. 3, No. 01, pp: 40-60.
17
USEPA. 2005. Guidelines for Carcinogen Risk Assessment. EPA/630/P-03/001F, http://www.epa.gov/cancer guidelines.
18
Vale, J.A., 1998. Toxicokinetic and toxicodynamic aspects of organophosphorus OP insecticide poisoning. Toxicology Letters. Vol. 649, pp: 102-103.
19
Viran, R.; Erkoc, F.O.; Polat, H. and Kocak, O., 2003. Invetigation of acute toxicity of deltamethrin on guppies (Poecilia eticulate). Ecotoxicol.Environ. Saf. Vol. 55, pp: 82-85.
20
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات بهکارگیری سوربات پتاسیم در جیره بیان ژن های مرتبط با رشد در ماهی کپورمعمولی (Cyprius carpio)
این تحقیق با هدف بررسی تأثیر سطوح مختلف نمک سوربات پتاسیم در جیره بر بیان ژن های مرتبط با رشد بچه ماهیان کپور معمولی صورت پذیرفت. بدین منظور تعداد 168 قطعه ماهی کپور با میانگین وزنی 2/6±15/2 گرم به مدت 8 هفته، در چهار تیمار و سه تکرار با جیره های آزمایشی حاوی سطوح مختلف صفر (شاهد)، 0/5، 1 و 2 درصد سوربات پتاسیم تغذیه شدند. در پایان دوره از کبد و مغز نمونه برداری، استخراج RNA انجام و برای سنتز cDNA از کیت SuPrime Script RTase استفاده شد.cDNA حاصله با استفاده از پرایمرهای ژن های مرتبط با رشد (IGF1 و GH) و ژن بتااکتین به عنوان ژن رفرنس در Real Time PCR استفاده شد. بیان هر دوژن در تیمارهای تغذیه شده نسبت به تیمار شاهد افزایش یافت. اختلاف معنی داری در میزان بیان ژن GH در تیمارهای تغذیه شده با 1 و 2 درصد نسبت به تیمار 0/5 درصد مشاهده شد (0/05>P). بیان ژن IGF-1 فقط در تیمار 1 درصد اختلاف معنی دار با تیمار 0/5 درصد نشان داد (0/05>P). نتایج نشان داد که بهترین عملکرد بیان ژن رشد مربوط به تیمارهای تغذیه شده با جیره حاوی 1 درصد سوربات پتاسیم میباشد و می تواند به عنوان محرک رشد در جیره غذایی آبزیان استفاده شود.
http://www.aejournal.ir/article_103687_f410b376270c7427569062ca1beaa393.pdf
2019-12-22
223
228
رشد
کپور معمولی
سوربات پتاسیم
بیان ژن
نیلوفر
ملایی قاسمی
niloofar.gh1371@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
علی
شعبانی
ali_shabany@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
رقیه
صفری
fisheriessafari@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سیلمانی ایرایی، م.؛ سجادی، م.م.؛ فرحی، ا.؛ کریم زاده، ص. و کرامت امیرکلاتی، ع.،1391. اثرات سطوح مختلف مکملهای اسیدهای آلی بر کارایی رشد، ترکیبات لاشه و شاخصهای خونی بچه ماهیان قزل آلای رنگین کمان (Oncorhyncgus mykiss). مجله بهره برداری و پرورش آبزیان. جلد 1، شماره 3، صفحات 10 تا 20.
1
Baruah, K.; Sahu, N P.; Pal, A.K., Jain, K.K., Debnath, D. and Mukherjee, S.C., 2007a. Dietary microbial phytase and citric acid synergistically enhances nutrient digestibility and growth performance of (Labeo rohita (Hamilton) juveniles at sub-optimal protein level. Aquaculture Research. Vol. 38, pp: 109-120.
2
Baruah, K.; Sahu, N.P.; Pal, A.K., Debnath, D.; Yengkokpam, S. and Mukherjee, S.C., 2007b. Interactions of dietary microbial phytase, citric acid and crude protein level on mineral utilization by rohu (Labeo rohita (Hamilton)), juveniles. World Aquaculture Society. Vol. 38, pp: 238-249.
3
Bustin, S.A.; Bens, V.; Garson, J.A.; Hellemans, J.; Huggett, J.; Kubista, M.; Mueller, R.; Nolan, T.; Pfaffl, M.W.; Shipley, G.L.; Vandesompele, J. and Wittwer, C.T., 2009. The MIQE guidelines: minimum information for publication of quantitative real-time PCR experiments. Clinical Chemistry. Vol. 55, No. 4, pp: 611-622.
4
Canibe, N.; Ricarde, M.E. and Jensen, B.B., 2003. An overview of the effect of organic acid on gut flora and gut health. Danish Institute of Agricultura Sciences, Research Centure Foulum, Denmark. 14 p.
5
Cummings, J.H.; Pomare, E.W.; Branch, W.J., Naylor, C.P.E. and Macfarlane, G.T., 1987. Shrt cgain fatty acids in human large intestine, potal, hepatic, and venous blood. Gut. Vol. 28, pp: 1221-1227.
6
Eidelsgurger, U., 1998. Feeding short-chain organic acids to pigs. In: Garnsworthy, P.C., Wiseman, J. (Eds). Recent Advances in Animal Nutrition. Nottingham University press, Noyyingham. pp: 93-106.
7
Freitag, M., 2007. Organic acids and salts promote performance and health in animal husbandry. In: Luckstadt, C., editor. Acidifiers in Animal Nutrition – A Guide for Feed Preservation and Acidification to Promote Animal Performance. 1st ed, Nottingham University Press, Nottingham, UK. pp: 1-11.
8
Gislason, G.; Olsen, R.E. and Ringo, E., 1994. Lack of growth-stimulating effect of lctate on Atlantic salmon, L. Aquaculture and Fisheries Management. Vol. 25, pp: 861-862.
9
Hossain, M.A.; Pandey, A. and Satoh, S., 2007. Effects of organic acids on growth and phosphorus utilization in red sea bream Pagrus major. Fisheries Science. Vol. 73, pp:1309-1317.
10
Hoseinifar, S.H. and Romano, N., 2017. Comparing the effects of different dietary organic acids on the growth, intestinal short-chain fatty acids, and liver histopathology of red hybrid tilapia (Oreochromis sp.) and potential use of these as preservatives. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 11, pp: 1-13.
11
Khajepour, F. and Hosseini, S.A., 2012. Citric acid improves growth performance and phosphorus digestibility in Beluga (Huso huso) fed diets where soybean meal partly replaced fish meal. Animal Feed Science and Technology. Vol.171, pp: 68-73.
12
Katoh, K.; Ohata, Y. and Ishiwata, H., 1999. Suppressing effects of short-chain fatty acids on growth hormone (GH) relesing hormone- induced GH release in isplated anterior pituitary cells of goals. Domestic animal Endocrinology. Vol. 17, No. 1, pp: 85-93.
13
Koh, C.B.; Romano, N.; Siti-Zahrah, A. and Ng, W.K., 2016. Effects of a dietary organic acids blend and oxytetracycline on the growth, nutrient utilization and total cultivable gut microbiota of the red hybrid tilapia, Oreochromis sp., and resistance to Strepto coccus agalactiae. Aquaculture Research. Vol. 47, pp: 357-369.
14
Lim, C.; Klesius, P.H.; Li, M.H. and Robinson, E.H., 2000. Interaction between dietary levels of iron and vitamin C on growth, hematology, immune response and resistance of channel catfish (Ictalurus punctatus) to Edwardsiella ictaluri challenge. Aquaculture. Vol. 185, pp: 313-327.
15
Liu, W.; Yang Y.; Zhang, J.; Gatlin, D.M.; Ringo, E. and Zhou, Z., 2014. Effects of dietary microencapsulated sodium butyrate on growth. Intestinal mucosal morphology, immune responde and adhesive bacteria in juvenile common carp (Cyprinus carpio) pre-fed with or without oxidized oil. British Journal of Nutrition. Vol. 112, pp: 15-29.
16
Luckstadt, C., 2008. The use of acidifiers in fish nutrition. CAB Reviews: Perspectives in Agriculture, Veterinary Science. Nutrition and Natural Resources. Vol. 44, pp: 1-8.
17
Macfarlane, S. and Macfarlane, G.T., 2003. Regulation of short-chain fatty acid production. Proceeding of Nutritional Society. Vol. 62, pp: 67-72.
18
Ng, W.K.; Koh, C.B.; Sudesh, K. and Siti-Zahrah, A., 2009. Effects of dietary organic acids on growth, nutrient digestibility and gut microflora of red hybrid tilapia, (Oreochromis sp) and subsequent survival during a challenge test with (Streptococcus agalactiae). Aquaculture Research. Vol. 40, pp: 1490-1500.
19
Ng, W.K. and Koh, C.B., 2011. Application of organic acid in aquafeeds: impacts on fish growth C (ed). Standards for Acidifiers principles for the Use of Organic Acids in Animal Nutrotion. Proceeding of the Ist International Acidifier summit. Nottingham University press, Nottingham. pp: 46-58.
20
Owen, M.A.G.; Waines, P.; Bradley, G. and Davies, S., 2006. The effect of dietary supplementation of sodium butyrate on the growth and microflora of (Clarias gariepinus) (Burchell 1822). Abstract from the12 th International Symposium Fish Nutrition and Feeding. Biarritz, France.
21
Pandey, A. and Satoh, S., 2008. Effects of organic acids on growth and phosphorus utilization in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fisheries Science. Vol. 74, pp: 867-874.
22
Ramli, N.; Heindl, U. and Sunanto, S., 2005. Efect of potassium diformate on growth performance of tilapia challenged with Vibrio anguillarum. Abstract, World Aquaculture, Bali, Indonesia.
23
Ringo, E., 1991. Effects of dietary lactate and propionate on growth and digesta in Arctic charr, Salvelinus alpinus (L). Aquaculture. Vol. 96, pp: 321-333.
24
Ringo, E.; Olsen, R.E. and Castell, J.D., 1994. Effect of dietary lactate on growth and chemical composition of Arctic charr Salvelinus alpinus. Jornal of the Word Aqucalture Society. Vol. 25, pp: 483-486.
25
Robels, R.; Lozano, A.B.; Sevilla, A.; Marquez, L.; Nuez Ortin, W. and Moyano, F.J., 2013. Effectvof partially protected buturate used as feed additive on growth and intestinal metabolism in sea bream (Sparus aurata). Fish physiology and Biochemistry. Vol. 39, pp: 1567-1580.
26
Roe, A.J.; McLaggan, D.; Davidson, I.O.;Byrne, C. and Brooth, I.R., 1998. Perturbation of anion balance during inhibition of growth of Escherichia coli by week acids. Journal of Bacteriology. Vol. 180, pp: 77-72.
27
Romano, N.; Koh, C.B. and Ng, W.K., 2015. Dietary microencapsulated organic acids blend enhances growth, phosphorus utilization, immune response, hepatopancreatic integrity and resistance against Vibrio harveyi in white shrimp, Litopenaeus vannamei. Aquaculture. Vol. 435, pp: 228-236.
28
Safari, R.; Hoseinifar, S.H.; Nejadmoghadam, S.H. and Jafar, A., 2008. Transciptomic study of mucosal immune, antioxidant and growth related genes and non-specific immune response of common carp (Cyprinus carpio) fed dietary Ferula (Ferula assafoetida). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 55, pp: 242-248.
29
Safari, R.; Hoseinifar, S.H.; Nejadmoghadam, S.H. and Khalil, M., 2017. Non-specific immune parameters, immune, antioxidantand growth-related genes expression of common carp (Cyprinus carpio) fed sodium propionate. Aquaculture Research. Vol. 5, pp: 1-9.
30
Safari, A.R.; Hoseinifar, S.H. and Kavandi, M., 2016. Modulation of antioxidant defense and immune response in zebra fish (Danio rerio) using dietary sodium propionate. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 10, pp: 10-20.
31
Silva, B.C.; Vieria, F.N.; Mourino, J.L.P.; Blivar, N. and Seiffert, W.Q., 2016. Butyrate and prppionate improve the growth performance of Litopenaeus vannamei. Aquacalture Research. Vol. 47, pp: 612-620.
32
Winton, J.R., 2001. Fosh health management. In: Wedemeyer, G., 2001. Fish hatchery management 2nd edition. Bethesda, M.D, American Fisheries Society. Vol. 10, pp: 559-639.
33
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر تغذیه متوالی و متناوب با پربیوتیک میتو بر فاکتورهای رشد، ترکیب لاشه و شاخص های خون شناسی در کپورمعمولی (Cyprinus carpio)
این پژوهش به منظور مقایسه اثرات استفاده متوالی و متناوب از 0/2 درصد پربیوتیک میتودر غذای کپورمعمولی بر شاخص های رشد، ترکیب لاشه و شاخص های خون شناسی انجام شد. تعداد 180 قطعه بچه ماهی با میانگین وزن 0/05±6/00 گرم به مدت 60 روز تحت آزمایش قرار گرفتند. آزمایش شامل 3 تیمار بود. تیمار 1 به مدت 60 روز غذای حاوی 2 گرم پربیوتیک میتو در کیلوگرم غذا دریافت کرد. درحالی که تیمارهای 2 و3 همین غذا را به ترتیب با فواصل 3 و 7 روزه دریافت کردند. براساس نتایج، بیش ترین وزن نهایی، درصد افزایش وزن ،ضریب رشد ویژه و تولید خالص ماهی در تیمار 1 به دست آمد که با تیمار 2 تفاوت معنی دار نداشت (0/05<P). بیش ترین فاکتور وضعیت مربوط به تیمار 1 بود که با دو تیمار دیگر تفاوت معنی دار داشت (0/05>P). در کل دوره پرورش تلفاتی در بین تیمارها مشاهده نشد. حداکثر میزان غذای خورده شده و شاخص کارایی پروتئین و کم ترین ضریب تبدیل غذایی با تفاوت معنی دار با سایر تیمارها نیز در تیمار 1 اندازه گیری شد. هم چنین تفاوت معنی داری از نظر ارزش غذایی لاشه بین سه تیمار مشاهده نشد. تیمار1 دارای بیش ترین تعداد گلبول قرمز و گلبول سفید و بیش ترین مقدار هموگلوبین و هماتوکریت بود که با تیمار 2 تفاوت معنی دار نداشت. بنابراین تغذیه متناوب با پربیوتیک میتو با فواصل 3 روزه، می تواند به جای تغذیه مستمر با پربیوتیک میتو در کپورمعمولی استفاده شود.
http://www.aejournal.ir/article_103713_b88c5a59db5e1ac3700557e8b5daba38.pdf
2019-12-22
229
236
کپورمعمولی
پربیوتیک میتو
فاکتورهای خونی
ترکیب لاشه
معصومه
بحرکاظمی
bahr.kazemi@gmail.com
1
گروه شیلات، واحد قائم شهر، دانشگاه آزاد اسلامی، قائم شهر، ایران
LEAD_AUTHOR
کاظم
معماریان
memarian.kazem@yahoo.com
2
گروه شیلات، واحد قائم شهر، دانشگاه آزاد اسلامی، قائم شهر، ایران
AUTHOR
جابر
نیک بخش
jnikbakhsh@gmail.com
3
گروه شیلات، واحد قائم شهر، دانشگاه آزاد اسلامی، قائم شهر، ایران
AUTHOR
بیواره، م.ر. و جعفریان، ح.ا.، 1396. مقایسه عملکردهای رشد، وضعیت تغذیه، بقاء و مقاومت در برابر استرس های محیطی در بچه ماهیان نورس کپور معمولی (Cyprinus carpio Linnaeus. 1758) با جیرههای غذایی مکمل سازی شده توسط دو پربیوتیک تجاری ایمکس و ایمکس اولترا. مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. دوره 12، شماره 1، صفحات 46 تا 63.
1
گارزانی فراهانی، ش.،1388.مطالعه برخی پارامترهای خون شناسی در خانواده ماهیان خاویاری. مجله بیولوژی جانوری. دوره 2، شماره 1، صفحات 57 تا 61.
2
محمدیان، ت.؛ مصباح، م.؛ روحانی زاده، س.؛ علیشاهی، م.؛ علیزاده، پ. و عبدی، ا.، 1393. مطالعه اثر ایمونوژن بر میکروفلور روده و ترکیبات لاشه در گونه Barbus grypus. مجله دامپروری (پژوهش و سازندگی). شماره 106، صفحات 2 تا 9.
3
محبوبی صوفیانی، ن.ا.؛ متقی، ا. و نعمت الهی، ا.، 1396. تأثیر پربیوتیک فرمکتو بر عملکرد رشد، فلور باکتریایی و مورفولوژی روده در ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 1، صفحات 239 تا 246.
4
ناصری، ا.ح. و اکرمی، ر.، 1393. اثر مقطعی استفاده از پربیوتیک مانان الیگوساکارید و بتا -1 و 3- گلوکان در عملکرد رشد، ترکیب لاشه و فعالیت لیزوزیم سرم ماهی قزلآلای رنگینکمان. مجله شیلات ایران، دانشگاه تهران. دوره 67، شماره 3، صفحات 425 تا 434.
5
یاراحمدی،پ.؛ فرحمند، ح.؛ کلنگی، ح. و میرواقفی، ع.ر.، 1393. مطالعۀ پروفایل هماتولوژی و بیوشیمی سرم قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) تغذیه شده با ایمونوژن. مجله شیلات ایران، دانشگاه تهران. دوره 67، شماره 3، صفحات 455 تا 465.
6
Ai, Q.; Mai, K.; Tan, B.; Xu, W.; Duan, Q.; Ma, H. and Zhang, L., 2006. Replacement of fish meal by meat and bone meal in diets for large Yellow croaker (Pseudosciaena crocea). Aquaculture. Vol. 260, pp: 255-263.
7
Akrami, R.; Qelich, A. and Zareii, A., 2011. Effect of dietary inulin on growth performance, survival, body composition and intestinal lactic acid bacteria density of Carp juvenile (Cyprinus carpio). Journal of Fish Sciences. Vol. 5, No. 4, pp: 87-94.
8
Akrami, R.; Razeghi-Mansour, M.; Chitsaz, H.; Ziaee, R. and Ahmadi, Z., 2012. Effect of dietary mannan oligosaccharide on growth performance, survival, body composition and some hematological parameters of carp juvenile (Cyprinus carpio). Journal of Animal Science Advances. Vol. 2, No. 11, pp: 879-885.
9
Andrews, S.R.; Sahu, N.P.; Pal, A.K. and Kumar, S., 2009. Haematological modulation and growth of Labeo rohita fingerlings: effect of dietary mannan oligosaccharide, yeast extract, protein hydrolysate and chlorella. Journal of Aquaculture Research. Vol. 41, pp: 61-69.
10
AOAC. 1990. Official methods of analysis. (15th ed.) Association of Official Analytical Chemists, Washington. Vol. 1, 49 p.
11
Blaxhall, P.C. and Daisley, K.W., 1973. Routine haematological methods for use with fish bloods. Journal of Fish Biology. Vol. 5, pp: 771-781.
12
Cerezuela, R.; Cuesta, A.; Meseguer, J. and Esteban, A., 2008. Effect of inulin on Gilthead seabream (Sparus aurata) innate immune parameters. Fish and Shellfish Immunology, Vol. 24, pp: 663-668.
13
De Schrijver, R. and Ollevier, F., 2000. Protein digestion in juvenile turbot (Scophtalmus maximus) and effects of dietary administration of Vibrio proteolyticus. Aquaculture. Vol. 186, pp: 107-116.
14
Dimitroglou, A.; Merrifield, D.L.; Moate, R.; Davies, S.J.; Spring, P.; Sweetman, J. and Bradley, G., 2009. Dietary mannan oligosaccharide supplementation modulates intestinal microbial ecology and improves gut morphology of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. American Society of Animal Science.Vol. 87, pp: 3226-3234.
15
Gultepe, N.; Hisar, O.; Salnur, S.; Hossu, B.; Tansel Tanrikul, T. and Aydln, S., 2012. Preliminary Assessment of Dietary Mannanoligosaccharides on Growth Performance and Health Status of Gilthead Seabream Sparus auratus. Journal of Aquatic Animal Health. Vol. 24, No. 1, pp: 37-42.
16
Hanley, F.; Brown, H. and Carbery, J., 1995. First observations on the Effects of mannan oligosaccharide added to hatchery diets for warm water hybrid red Tilapia. 11th Annual Symposium on Biotechnology in the Feed Industry, Lexington, KY, USA.
17
Irianto, A. and Austin, B., 2002. Use of probiotics to control furunculosis in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Journal of Fish Disease. Vol. 25, pp: 333-342.
18
Karimzadeh, S.; Keramat Amirkolaie, A. and Esmaeili Molla, A., 2013. Effects of Different Levels of Immunogen on Growth Performance, Intestinal Bacteria Colonization and Survival Rate in Rutilus kutum Larvae. World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 5, No. 6, pp: 664-669.
19
Keramat Amirkolaie, A.; Karimzadeh, S. and Mohamad Jafary, A., 2013. The Effects of Dietary Supplement of Immunogen on Growth Performance, and Visceral and Hepatic Somatic Indices of Juvenile Rainbow Trout, Oncorhynchus mykiss. Asian Fisheries Science. Vol. 26, pp: 232-242.
20
Keramat Amirkolaie, A. and Rostami, B., 2015. Effect of dietary supplementation with Immunogen on the growth, hematology and gut microbiota of fingerling Common carp. Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 18, No. 4, pp: 379-385.
21
Mazurkiewicz, J.; Przybyl, A. and Golski, J., 2008. Usability of Fermacto prebiotic in feeds for common carp (Cyprinus carpio L.) fry. Nauka Przyroda Technologie. Vol. 2-3, No. 15, pp: 1-9.
22
Mira, M.; Akrami, R. and Hedayatifard, M., 2011. Effect of dietary inulin on growth performance, survival and body composition of rutilus frisii kutum. Journal of Marine Biology. Vol. 3, No. 9, pp: 53-59.
23
Nikbakhsh, J. and Bahrekazemi, M., 2017. Effect of diets containing different levels of prebiotic Mito on the growth factors, survival, body composition, and hematological parameters in Common carp Cyprinus carpio fry. Journal of Marine Biology and Aquaculture. Vol. 3, No. 1, pp: 1-6.
24
Raa, R.; Robertson, B. and Sung, H., 1992. The use of immune stimulants to increase resistance of aquatic organisms to microbial infections. In: Diseases in Asian Aquaculture 1, Asian Fisheries Society, Manila, Philippines. pp: 39-50.
25
Razeghi Mansour, M.; Akrami, R.; Ghobadi, S. H.; Amani Denji, K.; Ezatrahimi, N. and Gharaei, A., 2012. Effect of dietary mannan oligosaccharide (MOS) on growth performance, survival, body composition, and some hematological parameters in giant sturgeon juvenile (Huso huso Linnaeus, 1754). Journal of Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 38, pp: 829-835.
26
Rehulka, J.; Minarik, B.; Cink, D. and Zalak, J., 2011. Prebiotic effect of fructo oligosaccharide on growth and physiological state of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Acta Universitatis Agriculturae et Silviculturae Mendelianae Brunensis. Vol. 5, pp: 227-235.
27
Sado, R.J.; Bicudo, A.J. and Cyrino, J.E., 2008. Feeding dietary mannan oligosaccharid to juvenile nile tilapia (Oreochromis niloticus), has no effect on hematological parameters and showed decreased feed consumption. Journal of World Aquaculture Society. Vol. 39, pp: 821-826.
28
Stoskopf, M.K., 1993. In: Fish Medicine. Edited by Stoskopf, M.K. Saunders, Philadelphia. pp: 113-131.
29
Ta'ati, R.; Soltani, M.; Bahmani, M. and Zamini, A.A., 2011. Growth performance, carcass composition and immunophysiological indices in juvenile great sturgeon (Huso huso) fed on commercial prebiotic, Immunoster. Iranian Journal of Fisheries Science. Vol. 10, No. 2, pp: 324-335.
30
Tovar, D.; Zambonino, J.; Cahu, C.; Gatesoupe, F.J.; Vazquezjuarez, R. and Lesel, R., 2002. Effect of live yeast incorporation in compound diet on digestive enzyme activity in sea bass (Dicentrarchus labrax) Larvae. Aquaculture. Vol. 204, pp: 113-123.
31
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات استفاده مجزا و تلفیقی پروبیوتیک (Lactobacillus casei) و پربیوتیک (A- MAX) در جیره غذایی بر بیان ژن های مرتبط با رشد (GH وIGF1) در بچه ماهی کپورمعمولی (cyprinus carpio)
در این آزمایش اثر پروبیوتیک لاکتوباسیلوس کازئی (Lactobacillus casei)، پربیوتیک AMAX و تلفیق پروبیوتیک و پربیوتیک بر بیان ژن هورمون رشد (GH) و فاکتور رشد شبه انسولینی (IGFI) درماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) مورد بررسی قرار گرفت. بدین منظور تعداد 180 قطعه ماهی کپور با میانگین وزنی 0/35±23/7 گرم به مدت 8 هفته با جیره های آزمایشی حاوی CFU/gr 107 (لاکتوباسیلوس کازئی)، 0/1% پربیوتیک AMAX و ترکیب پروبیوتیک و پربیوتیک و جیره شاهد تغذیه شدند. در پایان دوره، از بافت کبد و مغز نمونه برداری شد و استخراج RNA انجام گرفت، برای سنتز cDNA از کیت Suprime Script RTase استفاده شد و بیان ژن های مذکور با استفاده از Real time PCR مورد بررسی قرار گرفت.نتایج نشان داد در گروه های تغذیه شده با پروبیوتیک، پربیوتیک و تلفیق پروبیوتیک وپربیوتیک میزان بیان ژن IGF1 به ترتیب 5/94، 5/68، 7/87 برابر گروه شاهد بود. هم چنین بیان ژنGH به ترتیب 9/25، 8/88، 17/35 برابر گروه شاهد بود. اختلاف معنی داری در هر دو ژن تغذیه شده با تلفیق پروبیوتیک وپربیوتیک با تیمارهای مجزای پروبیوتیک و پربیوتیک مشاهده شد (0/05>P).نتایج این مطالعه نشان دهنده اثرات مفید لاکتوباسیلوس کازئی و پربیوتیک AMAX به ویژه به صورت تلفیقی بر شاخص های رشد ماهی کپور می باشد (0/05>P).
http://www.aejournal.ir/article_103750_80480f53d9161424499cf31de1af956c.pdf
2019-12-22
237
242
ماهی کپور
لاکتوباسیلوس کازئی
پربیوتیک AMAX
IGF1
gh
رشد
زهرا
نیکی ملکی
zahra.niki21@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
علی
شعبانی
ali_shabany@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
رقیه
صفری
fisheriessafari@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
افشارمازندران، ن.، 1389. کتاب راهنمای عملی تغذیه و نهاده های غذایی و دارویی آبزیان در ایران. انتشارات نوربخش. 216 صفحه.
1
اکرمی، ر.؛ ابراهیمی، ع.؛ شاملوفر، ف.م. و رازقی منصور، م.، 1393. تأثیر پریبیوتیک مانان الیگوساکارید بر عملکرد رشد، بازماندگی و مقاومت لاروی ماهی قزل آلای رنگین کمان در برابر استرس های محیطی. نشریه پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. دوره 2، شماره 3، صفحات 29 تا 42.
2
ایمان پور، م.ر.؛ روحی، ز.؛ سلاقی، ز.؛ بیک زاده، آ. و داودی پور، ع.ر.،1394. اثر پربیوتیک پریمالاک بر شاخص های رشد، پارامترهای بیوشیمیایی خون، بازماندگی و مقاومت در برابر تنش شوری بچه ماهی کپورمعمولی دریایی. علوم و فنون شیلات. دوره 4، شماره 3، صفحات 17 تا 28.
3
باعثی، ف.؛ آبرومند، ع.؛ ضیائی نژاد، س. و جواهری بابلی، م.، 1395. تأثیر لاکتوباسیلوس های پروبیوتیکی تجاری بر پارامترهای رشد، بقاء و شاخص های تغذیه ای ماهی کپور معمولی. نشریه توسعه آبزی پروری. سال 10، شماره 4، صفحات 34 تا 49.
4
صفری،ر.؛ حسینی فر، س.ح. و خلیلی، م.، 1395. اثرات به کارگیری پروبیوتیک لاکتوباسیلوس کازئی و پودر قارچ صدفی در جیره بر بیان ژن های مرتبط با ایمنی (TNF-alfaو IL1b) در ماهی زبرا . طرح پژوهشی دانشکده شیلات و محیط زیست. 70 صفحه.
5
خدابخش، ا. و قبادی، ش.، 1392. تاثیر مخلوط پروبیوتیک الیگوساکارید (MOS) و بتا 1و3گلوکان بر شاخص های رشد، بازماندگی و ترکیب لاشه بچه ماهی کپورعلفخوار(Ctenopharyngodon idella). علوم تکثیر و آبزی پروری. سال 1، شماره 1، صفحات 41 تا 54.
6
صابریان جویباری، م.؛ قبادی، ش. و وطن دوست، ص.، 1395. تاثیر سطوح مختلف پریبیوتیک A-MAX برشاخص های رشد، بازماندگی و ترکیبات لاشه در بچه ماهی کپورمعمولی. نشریه توسعه آبزی پروری، دوره 2، شماره 1، صفحات 63 تا 75.
7
محمودیان، ا.؛ کرامت امیرکلایی، ع.؛ اکرمی، ر. و بهلکه، ا.، 1394. بررسی اثر پریبیوتیک آلفامیون و پروبیوتیک پروتکسین به صورت انفرادی و ترکیبی بر رشد بچه ماهیان کپورمعمولی. پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. دوره 3، شماره 1، صفحات 93 تا 104.
8
Alderman, D.J., 2002. Trends in therapy and prophylaxis. Bulletin of the European Association of Fish Pathologists. Vol. 22, No. 2, pp: 117-125.
9
Andani, H.R.R.; Tukmechi, A.; Meshkini, S. and Sheikhzadeh, N., 2012. Antagonistic activity of two potential probiotic bacteria from fish intestines and investigation of their effects on growth performance and immune response in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Applied Ichthyology. Vol. 28, pp: 728-734.
10
Asaduzzaman, M.; Sofia, E.; Shakil, A.; Haque, N.F.; Khan, M.N.A.; Ikeda, D.; Kinoshita, S. and Abol-Munafi, A.B., 2018. Host gut-derived probiotic bacteria promote hypertrophic muscle progression and upregulate growth-related gene expression of slow-growing Malaysian Mahseer Tor tambroides. Aquaculture Reports. Vol. 9, pp: 37-45.
11
Balcázar, J.L.; Vendrell, D.; De Blas, I.; Ruiz-Zarzuela, I. and Múzquiz, J.L., 2009. Effect of Lactococcus lactis CLFP 100 and Leuconostoc mesenteroides CLFP 196 on Aeromonas salmonicida infection in brown trout (Salmo trutta). J. Mol. Microb. Biotech. Vol. 17, pp: 153-157.
12
Bekcan, S.; Dogankaya, L. and cakirogollari, G.C., 2006. Growth and body composition of European catfish (Silurus glanis) fed diet containing different percentages of protein. The Israeli j of Aquaculture. Vol. 58, No. 2, pp: 137-142.
13
Boloki, M.L.; Jafaryan, H.; Faramarzi, M. and Adineh, H., 2011. The effects of Amax yeast fed to Persian sturgeon (Acipencer persicus) larvae via bioenrichment of Daphnia magna. AACL Bioflux. Vol. 4, pp: 361-367.
14
Carnevali, O.; de Vivo, L.; Sulpizio, R.; Gioacchini, G.; Olivotto, I.; Silvi, S. and Cresci, A., 2006. Aquaculture. Vol. 258, pp: 430-438.
15
Chabrillón, M.; Rico, R.; Arijo, S.; Díaz-Rosales, P.; Balebona, M. and Moriñigo, M., 2005. Interactions of microorganisms isolated from gilthead sea bream, Sparus aurata L., on Vibrio harveyi, a pathogen of farmed Senegalese sole. J. Fish. Dis. Vol. 28, pp: 531-537.
16
Doos Ali Van, Z.; Alishahi, M. and Tabande, M.R., 2014. Effects of different levels of Lactobacillus casei as probiotic on growth performance and digestive enzymes activity of Barbus gryprus. International Journal of Biosciences. Vol. 4, pp: 106-116.
17
Duan, C. and Plisetskaya, E.M., 1993. Nutritional regulation of insulin-like growth Factor-I mRNA expression in salmon tissues. J of Endocrinology. Vol. 139, pp: 243-252.
18
Dimitroglou, A.; Merrifield, D.L.; Moate, R.; Davies, S.J.; Spring, P. and Sweetman, J., 2010. Effects of mannan oligosaccharide (MOS) supplementation on growth performance, feed utilisation, intestinal histology and gut microbiota of gilthead sea bream (Sparus aurata). Aquaculture. Vol. 300, pp: 182-188.
19
Hassan, M.S.M.1.; Moustafa, M.M.A.; EL-Garhy, H.A.S., and Refaat, M.H., 2015. The influence of symbiotic on growth and expression of GH, GHR1 and IGF-I genes in Oreochromis niloticus fingerlings. Journal of Fisheries and Aquaculture. Vol. 6, pp: 176-182.
20
Jurado, J.; Villasanta-González, A.; Tapia-Paniagua, S. T.; Balebona, M.C.; de la Banda, I.G.; Moríñigo, M.Á. and Prieto-Álamo, M.J., 2018. Dietary administration of the probiotic Shewanella putrefaciens Pdp11 promotes transcriptional changes of genes involved in growth and immunity in Solea senegalensis larvae. Fish & shellfish immunology. Vol. 77, pp: 350-363.
21
Longland, T.M.; Oikawa, S.Y.; Mitchell, C.J.; Devries, M.C. and Phillips, S.M., 2016. Higher compared with lower dietary protein during an energy deficit combined with intense exercise promotes greater lean mass gain and fat mass loss: a randomized trial. Am. J. Clin. Nutr. Vol. 103, pp: 738-746.
22
Nelson, S.N. and Van der Kraak, G., 2010. Characterization and regulation of the insulin-like growth factor (IGF) system in the zebrafish (Danio rerio) ovary. Gen Comp Endocrinol. Vol. 168, pp: 111-120.
23
Norouzi, M.; Meftah, H. and Karimzadeh, S., 2010. The Study of Effect of dietary Mannan oligosaccharides as prebiotic on growth performance and some blood metabolites in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). ISFNF. 275 p.
24
Sado, R.J.; Bicudo, A.J.D.A. and Cyrino, J.E.P., 2008. Feeding dietary mannan oligosaccharid to juvenile nile tilapia (Oreochromis niloticus), has no effect on hematological parameters and showed decreased feed consumption, Journal of World Aquaculture Society. Vol. 39, pp: 821-826.
25
Safari, R.; Adel, M.; Lazado, C.C.; Caipang, C.M. and Dadar, M., 2016. Host-derived probiotics Enterococcus casseliflavus improves resistance against Streptococcus iniae infection in rainbow trout via immunomodulation. Fish Shellfish Immun. Vol. 52, pp: 198-205.
26
Salamatdoustnobar, R.; Ghorbani, A.; Ghaem maghami, S. and Motalebi, V., 2011. Effect of prebiotic on the fingerling rainbow trout performance parameters (Oncorhynchus mykiss). World journal of fish and marine science. Vol. 3, No. 4, pp: 305-330.
27
Staykov, Y.; Spring, P.; Denev, S. and Sweetman, J., 2007. Effect of mannan oligosaccharide on the growth performance and immune status of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture International. Vol. 15, pp: 153-161.
28
ORIGINAL_ARTICLE
عملکرد سطوح مختلف نانو ذرات اکسیدروی (ZnO NPs) بر میزان آنزیم های آنتی اکسیدانی کبد در ماهی کوی
کاربردهای صنعتی پیشرفته نانوذرات (NPs) موجب افزایش احتمال انحلال آن ها در اکوسیستم های آبی شده و از سویی مصرف آن ها توسط موجودات آبزی، قبل ازبین رفتن این ذرات، باعث تهدید زندگی آبزیان شده است. از آن جا که نانوذرات ها پس از ورورد باعث تغییر مکانیسم های طبیعی فیزیولوژیک ماهیان می شود، لذا هدف این تحقیق، تاثیر نانوذرات اکسیدروی (0، 1، 2، 4 و 8 میلی گرم بر لیتر) ﺑه روش ﺳﺎﮐﻦ ﺑﺮ آنزیم های آنتی اکسیدانی کبد در ماهی کوی(Cyprinus Carpio) در یک دوره 2 و 10 روزه بود. ذرات نانواکسید روی موجب تغییرات معنی دار قابل توجهی در آنزیم های کبدی شدند (0/05>p). این تغییرات آنزیم های کبدی در پایان روز دهم شامل کاهش سطوح سوپراکسید دسموتاز SOD) 0/13±92)، گلوتاتیون پراکسیداز GSH-Px)0/27±19/14)، کاتالاز CAT) 0/23±36/21) (نانو مول بر میلی گرم پروتئین) و افزایش سطح مالون دی آلدئید MDA) 0/97±50/18) (نانو مول بر میلی گرم پروتئین) نسبت به گروه شاهد بود که این تغییرات وابسته به میزان دوز و مدت زمان در معرض قرار گرفتن ماهیان به نانوذرات بود. این نتایج حاکی از آن است که نانوذرات روی در ﻣﺤﯿﻂ ﻫﺎی آﺑﯽ ﺑﺎ ﻏﻠﻈﺖ ﻫﺎی مورد مطالعه باعث افزایش استرس اکسیداتیو و اثرات نامناسبی بر آنزیم های کبدی داشته و این پارامترها را دﭼﺎر ﺗﻐﯿﯿﺮات ﺷﺪﯾﺪ می ﻧﻤﺎﯾﺪ.
http://www.aejournal.ir/article_103766_0581ecea42433d03eb660af84751eb0c.pdf
2019-12-22
243
248
نانوذرات اکسید روی
آنزیم های آنتی اکسیدانی کبد
ماهی کوی
محمد
کاظمیان
aquaculture@live.com
1
ﮔﺮوه ﺷﯿﻼت، داﻧﺸﮑﺪه ﻋﻠﻮم و ﻓﻨﻮن درﯾﺎﯾﯽ، واﺣﺪ تهران ﺷﻤﺎل، داﻧﺸﮕﺎه آزاد اﺳﻼﻣﯽ، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
مرجان
بخشی
2
ﮔﺮوه ﺷﯿﻼت، داﻧﺸﮑﺪه ﻋﻠﻮم و ﻓﻨﻮن درﯾﺎﯾﯽ، واﺣﺪ تهرانﺷﻤﺎل، داﻧﺸﮕﺎه آزاد اﺳﻼﻣﯽ، تهران، ایران
AUTHOR
ﺷﮑﻮری، م.؛ اﺑﺪاﻟﯽ، س. و ﻧﮕﺎرﺳﺘﺎن، ح.؛ 1391. ﺑﺮرﺳﯽ اﺛﺮ ﺳﻤﯿﺖ روی ﺑﺮ ﺑﺮﺧﯽ از ﭘﺎراﻣﺘﺮﻫﺎی ﺑﯿﻮﺷﯿﻤﯿﺎﯾﯽ ﺧﻮن ﺑﭽﻪﻣﺎﻫﯽ ﻓﯿﺘﻮﻓﺎگ. ﻣﺠﻠﻪ ﭘﮋوﻫﺶﻫﺎی ﻋﻠﻮم و ﻓﻨﻮن درﯾﺎﯾﯽ. سال 9، شماره 3، صفحات 31 تا 39.
1
Abdel-Khalek, A.; Badran, S. andMarie, M., 2016. Toxicity evaluation of copper oxide bulk and nanoparticles in Nile tilapia, Oreochromis niloticus, using hematological, bioaccumulation and histological biomarkers. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 42, No. 4, pp: 1225-1236.
2
Almeida, E.A.; Loureiro, G.R.; Marrtinez, S. and Miyamoto, J., 2007. Oxidative stress in Perna perna and other bivalves as indicators of environmental stress in the Brazilian marine environment: Antioxidants, lipid peroxidation and DNA damage. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology. Vol. 146, pp: 588-600.
3
Bhattacharya, S.; Bhattacharya, A. and Roy, S., 2007. Arsenic-induced responses in freshwater teleost. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 33, pp: 463-473.
4
Baker, RTM.; Martin, P. and Davis, S.J., 1997. Ingestion of sub-lethal levels of iron sulphate by African catfish affects growth and tissue lipid peroxidation. Aquatic Toxicology. Vol. 40, pp: 51-61.
5
Borkovic, S.S.; Saponjic, J.S.; Pavlovic, S.Z.; Blagojevic, D.P. andMilos evic, S.M., 2005. The activity of antioxidant defense enzymes in the mussel Mytilus galloprovincialis from the Adriatic Sea. Comp. Biochemistry Physiology. Vol.8, pp: 413-428.
6
Brand, M.E., 2001. Bioaccumulation of Metals in Labeo Congoro from the Olifants River (Mpumalanga) and the Effect of Nickel on the Hematology of Fish (M.Sc. thesis). Rand Afrikaans Univ.
7
Brun, NR.; Lenz, M.; Wehrli, B. and Fent, K., 2014. Comparative effects of zinc oxide nanoparticles and dissolved zinc on zebrafish embryos and eleuthero-embryos: Importance of zinc ions. Science of the Total Environment. Vol. 476-477, pp: 657-666.
8
Buege, J.A. and Aust, S.D., 1978. Microsomal lipid peroxidation. Methods in enzymology. Vol. 52, pp: 302-310.
9
Chen, P.J.; Tan, S.W. and Wu, W.L., 2012. Stabilization or oxidation of nanoscale zero valent iron at environmentally relevant exposure changes bioavailability and toxicity in medaka fish. Environmental Science Technology. Vol. 46, pp: 8431-8439.
10
Federici, G.; Shaw, B.J. and Handy, R.D., 2007. Toxicity of titanium dioxide nanoparticles to rainbow trout: Gill injury, oxidative stress, and other physiological effects. Aquatic Toxicology. Vol, 84, pp: 415-430.
11
Fernandez, D.; Garcia-Gomez, C. and Babin, M., 2013. In vitro evaluation of cellular responses induced by ZnO nanoparticles, zinc ions and bulk ZnO in fish cells. Science Total Environment. Vol. 452-453, pp: 262-274.
12
Goth, L., 1991. A simple method for determination of serum catalase activity and revision of reference range. International journal of clinical chemistry. Vol. 196, pp: 143-51.
13
Gule, I.; Leonard, B. and Holdway, D.A., 1997. Oil and dispersed oil toxicity to amphipods and snails. Spill sciences technology bulletin. Vol. 4, pp: 1-6.
14
Gu, l.S.; Belge-Kurutas, E.; Yldz, E.; Sahan, A. and Doran, F., 2004. Pollution correlated modifications of liver antioxidant systems and histopathology of fish (Cyprinidae) living in Seyhan Dam Lake, Turkey. Environment. International. Vol. 30, pp: 605-609.
15
Han, D.; Xie, S.; Liu, M.; Xiao, X.; Liu, H.; Zhu, X. and Yang, Y., 2011. The effects of dietary selenium on growth performances, oxidative stress and tissue selenium concentration of gibel carp (Carassius auratus gibelio). Aquaculture nutrition. Vo. 17, No. 3, pp: 741-749.
16
Hao, L.; Chen, L.; Hao, J. and Zhong, N., 2013. Bioaccumulation and sub-acute toxicity of Zinc Oxide nanoparticles in juvenile Carp (Cyprinus Carpio). Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 91, pp: 52-60.
17
Khan, M.S.; Jabeen, F.; Qureshi, N.A.; Asghar, M.S.; Shakeel, M. and Noureen, A., 2015. Toxicity of silver nanoparticles in fish: a critical review. J of Biodiversity and Environmental Sciences. Vol. 6, No. 5, pp: 211-227.
18
Kappus, H., 1985. Lipid peroxidation: mechanisms, enzymology, and biological relevance in Oxidative Stress, American Press, New York. pp: 273-310.
19
Kaya, H.; Aydın, F.; Gurkan, M.; Yılmaz, S.; Mehmet Ates, M.; Demir, V. and Arslan, Z., 2015. Effects of zinc oxide nanoparticles on bioaccumulation and oxidative stress in different organs of tilapia. Environmental Toxicology and Pharmacology. Vol. 40, pp: 936-947.
20
Li, H.; Zhou, Q.; Wu, YFJ.; Wang, T. and Jiang, G., 2009. Effects of waterborne nano-iron on medaka antioxidant enzymatic activity, lipid peroxidation and histopathology. Ecotoxicology & Environmental Safety. Vol. 72, pp: 684-692.
21
Livingstone, D.R., 2003. Oxidative stress in aquatic organism in relation to pollution and aquaculture. Revue de medecine veterinaire. Vol. 154, No. 6, pp: 427-430.
22
Marklund, S.L. and Marklund, G., 1974. Involvement of the superoxide anion radical in the auto oxidation of pyrogallol and a convenient assay for superoxide dismutase. European Journal Biochemistry. Vol. 47, pp: 469-474.
23
Mocan, T.; Clichici, S.; Agoston-Coldea, L.; Mocan, L.; Simon, S. and Ilie, I.R., 2010. Implications of oxidative stress mechanisms in toxicity of nanoparticles (review). Acta Physiologica Hungarica. Vol. 97, pp: 247-255.
24
Monteiro, D.; Rantin, F. and Kalinin, A., 2010. Inorganic mercury exposure: toxicological effects, oxidative stress biomarkers and bioaccumulation in the tropical freshwater fish matrinxa, Brycon amazonicus Ecotoxicology. Vol. 19, pp: 105-123.
25
Nowack, B. and Bucheli, T.D., 2007. Occurrence, behavior and effects of nanoparticles in the environment. Environment Pollution. Vol. 150, pp: 5-22.
26
Omoregie, E.; Ufodike, E.B. and Keke, I.R., 1990. Tissue chemistry of O. niloticus exposed to sublethal concentrations of Gammalin 20 and Actellic 25EC. Journal of Aquatic Science. Vol. 5, pp: 33-36.
27
Pandey, S.; Parvez, S.; Sayeed, I.; Haque, R.; Bin-Hafeez, B. and Raisuddin, S., 2003. Biomarkers of oxidative stress: A comparative study of river Yamuna fish Wallago attu. Journal Science Total Environment. Vol. 309, pp: 105-115.
28
Reed, D.J.; Babson, J.R.; Beatty, P.W.; Brodie, A.E.; Ellis, W.W. and Potter, D.W., 1980. High-performance liquid chromatography analysis of Nano mole levels of glutathione, glutathione disulfide, and related thiols and disulfides. Analytical Biochemistry. Vol. 106, pp: 55-62.
29
Segets, D.; Gradl, J.; Taylor, R.K.; Vassilev, V. and Peukert, W., 2009. Analysis of optical absorbance spectra for the determination of ZnO nanoparticle size distribution, solubility & surface energy. ACS Nano. Vol. 3, pp: 1703-1710.
30
Smith, C.J.; Shaw, B.J. and Handy, R.D., 2007. Toxicity of single walled carbon nanotubes to rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): Respiratory toxicity, organ pathologies, and other physiological effects. Aquatic toxicology. Vol. 82, pp: 94-109.
31
Vijayakumar, T.; Siva, N.D. and Kirubakaran, S.A., 2016. Fate and upshots of Zinc oxide Nano phase as a pollutant in a fresh water fish Tilapia (Oreochromis mossabicus) and its Physiological alterations in Hematology, Antioxidant level and Histology. International Journal Res.Vol. 3, pp: 634-653.
32
Sen, C.K.; Atalay, M. and Hanninen, O., 1994. Exercise-induced oxidative stress: glutathione supplementation and deficiency. J Apply Physiology. Vol. 77, pp: 2177-2187.
33
Subashkumar, S. and Selvanayagam M., 2014. First report on: Acute toxicity and gill histopathology of fresh water fish Cyprinus carpio exposed to Zinc oxide (ZnO) nanoparticles. International Journal of Scientific and Research Publications. Vol. 4, pp: 1-4.
34
Topham, M.K. and Prescott, S.M., 2001. Diacylglycerol kinase zeta regulates Ras activation by a novel mechanism. Journal Cell Biology. Vol. 152, No. 6, pp:1135-1143.
35
Weldegebriel, Y.; Chandravanshi, B.S. and Wondimu, T., 2012. Concentration levels of metals in vegetables grown in soils irrigated with river water in Addis Abada, Ethiopia. Ecotoxicology Environment. Vol. 77, pp: 57-63.
36
Winston, G.W. and Di Giulio, R.T., 1991. Prooxidant and antioxidant mechanisms in aquatic organisms. Aquatic Toxicology. Vol. 19, pp: 137-161.
37
Zhu, S.Q.; Oberdorster, E. and Haasch, M.L., 2006. Toxicity of an engineered nanoparticle (fullerene, C60) in two aquatic species, Daphnia and fathead minnow. Marine Environment. Vol. 62, pp: S5-S9.
38
ORIGINAL_ARTICLE
اثر القای تریپلوئیدی با استفاده از شوک گرمایی بر میزان تفریخ، بقاء و تریپلوئیدی در لارو ماهی کوی (Cyprinus carpio)
هدف از این آزمایش بررسی اثر شوک گرمایی روی القای تریپلوئیدی در ماهی کوی (Cyprinus carpio) بود. 3 دمای شوک (38، 40 و 42 درجه سانتی گراد)، 5 مدت زمان آغاز شوک (1، 2، 4، 6 و 8 دقیقه پس از لقاح) و 3 مدت زمان شوک (1، 2 و 3 دقیقه) مورد آزمایش قرار گرفتند. گروهی از تخم ها به عنوان گروه شاهد درنظر گرفته شد. تعداد تیمارها به همراه گروه شاهد 46 تیمار بود. نتایج آزمایش نشان داد بیش ترین میزان تفریخ (59/49 درصد) در تیمارهای 19 (دمای 38 درجه سانتی گراد، 4 دقیقه پس از لقاح، مدت زمان 1 دقیقه)، 10 (دمای 38 درجه سانتی گراد، 2 دقیقه پس از لقاح، مدت زمان 1 دقیقه) و 28 (دمای 38 درجه سانتی گراد، 6 دقیقه پس از لقاح، مدت زمان 1 دقیقه) به دست آمد، در حالی که بین این تیمارها و گروه شاهد اختلاف معنی داری وجود نداشت (0/05<P). هم چنین میزان بقاء لاروها با افزایش دمای شوک و مدت زمان شوک به طور معنی داری کاهش یافت (0/05>P). بیش ترین میزان تریپلوئیدی (65/95 درصد) و بازده تریپلوئیدی (63/75 درصد) در دمای 40 درجه سانتی گراد، 6 دقیقه پس از لقاح و مدت زمان 2 دقیقه (تیمار 32) مشاهده شد. نسبت حجم گلبول قرمز و هسته آن در ماهیان تریپلوئید به ترتیب 2/74 و 1/92 برابر ماهیان دیپلوئید بود. با توجه به نتایج به نظر می رسد استفاده از شوک گرمایی با دمای 40 درجه سانتی گراد، 6 دقیقه پس از لقاح و مدت زمان 2 دقیقه می تواند بیش ترین تاثیر را در القای تریپلوئیدی در ماهی کوی داشته باشد.
http://www.aejournal.ir/article_103818_bc34315f2f654103a164188001b81874.pdf
2019-12-22
249
256
ماهی کوی
تریپلوئیدی
شوک گرمایی
شیما
هاتفی
shima.hatefi@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
محمد
سوداگر
sudagar_m@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
عباسعلی
حاجی بگلو
alihajibeglou@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
محمد
هرسیج
m_harsij80@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده علوم کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
AUTHOR
تیموریان، س.ا.ب.، 1395. بررسی تاثیر پروبیوتیک لاکتوباسیلوس اسیدوفیلوس Lactobacillus acidophilus بر شاخص های رشد ماهی کویی. پایان نامه دکتری رشته دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی. دانشگاه آزاد اسلامی کرج.
1
خیابانی، ع.ر.، 1394. مروری بر نحوه پیدایش و تکامل ماهی کوی (کپور زینتی) امروزی. آبزیان زینتی. سال 2، شماره 1، صفحات 37 تا 42.
2
مورکی، ن.؛ دادگر، ش. و نادری، م.ص.، 1393. اثر گیاه جعفری (Petroselinum sativum) بر شاخص رشد و بقای ماهی کوی (Cyprinus carpio). نشریه توسعه آبزی پروری. سال 8، شماره 2، صفحات 63 تا 72.
3
مومنی نژاد، ع.، 1392. القاء تکثیر در کپور کوی (Cyprinus carpio) با استفاده از هورمون HCG و ترکیب Ovaprim. پایان نامه کارشناسی ارشد مهندسی منابع طبیعی، تکثیر و پرورش آبزیان. دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان.
4
Aruljothi, K., 2015. Mass production of triploid Rohu, Labeo rohita (Ham.) by chromosome manipulation technique.Thesis submitted in part fulfillment of the requirements for the Degree of Master of Fisheries Science in Fish Biotechnology, university of Tamil Nadu, Nagapattinam.
5
Basavaraju, Y.; Mair, G.C.; Mohan Kumar, H.M.; Pradeep Kumar, S.; Keshavappa, G.Y. and Penman, D.J., 2002. An evaluation of triploidy as a potential solution to the problem of precocious sexual maturation in common carp, Cyprinus carpio, in Karnataka, india. Aquaculture. Vol. 204, pp: 407-418.
6
Bencsik, I.; Pacala, N.; Dumitrescu, G.; Dronca, D.; Stanculet, J. and Petculescu, C., 2013. Triploidy determination in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) based on erythrocytes dimensions. Animal Science and Biotechnologies. Vol. 46, pp: 113-117.
7
Benfey, T.J.; Sutterlin, A.M. and Thompson, R.J., 1984. Use of erythrocyte measurement to identify triploid salmonid. Canadian j. fish. Aquatic sci. Vol. 41, pp: 980-984.
8
Billard, R.; Richard, M. and Breton, B., 1977. Stimulation of gonadotropin secretion after castration in rainbow trout. Gen. and compar. Endocrin. Vol. 33, pp: 163-165.
9
Chalmers, L.; Thompson, K.D.; Taylor, J.F.; Black, S.; Miguad, H.; North, B. and Adams, A., 2016. A comparison of the response of diploid and triploid Atlantic salmon (Salmo salar) siblings to a commercial furunculosis vaccine and subsequent experimental infection with Aeromonas salmonicida. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 57, pp: 301-308.
10
Coyle, S.D.; Durborow, R.M. and Tidwell, J.H., 2004. Anesthetics in aquaculture, publication 3900, Stoneville, Mississippi: southern regional aquaculture center.
11
Das, S.K., 2004. Evaluation of a new spawning agent, ovopel in induce breeding of indian Carps. Asian fish. Sci. Vol. 17, pp: 313-32.
12
Dillon, J.C., 1988. Production of triploid Rainbow Trout for evaluation in south Dakota waters. A thesis submitted in partial fulfillment of the requirements for the degree master of science, major in wildlife and fisheries sciences (fisheries option), university of South Dakota State.
13
Felip, A.; carrillo, M.; Herráez, M.P.; Zanuy, S. and Basurco, B., 2009. Protocol F - Induction of triploidy by cold shock, Pratical guide of protocols: chromosome set manipulation. Options méditerranéennes: Série B. Etudes et Recherches. No. 63, pp: 43-48.
14
Hassanzadeh saber, M. and Pourkazemi, M., 2012. Induction of triploidy in grass carp Ctenopharyngodon idella (Valenciennes, 1844), Comparison of cold and heat shocks. Caspian journal of environmental sciences. Vol. 10, No. 2, pp: 195-204.
15
Havardstun, S., 2011. Triploid induction in Atlantic cod (Gadus morhua L.) by the use of different pressure levels. Thesis for fulfilment of the degree master of science in aquaculture biology, university of Bergen, Norwey.
16
Karal Marx, K. and Sukumaran, N., 2007. Production of triploid African catfish, Clarias gariepinus (Burchell), using chromosome manipulation techniques. Bangladesh journal of fish research. Vol. 2, No. 11, pp: 121-130.
17
Lemoine, L.H. and Smith, T.L., 1980. Ploploidy induced in brook trout by cold shock. Trans Am Fish Soc. Vol. 109, pp: 626-631.
18
Nascimento, N.F.; Pereira-Santos, M.; Piva, L.H.; Manzini, B.; Fujimoto, T.; Senhorini, J.A.; Yasui, G.S. and Nakaghi, L.S.O., 2017. Growth, fatty acid composition, and reproductive parameters of diploid and triploid yellowtail tetra Astyanax altiparanae. Aquaculture. Doi: 10.1016/j. aquaculture.2017.01.007.
19
Olele, N.F. and Tighiri, O.H., 2013. Optimization of triploidy induction and growth performance of Clarias anguillarias (African catfish) using cold shock. Academic journal of interdisciplinary studies. Vol. 2, No. 7, pp: 189-196.
20
Pushpa Geetha. S. and Jayaprakas, V., 2014. Growth performance, Reproductive sterility and distinct morphology of Triploid fringed lipped Carp, Labeo fimbriatus. J. Aquat. Biol.Fish. Vol. 1, No. 2, pp: 201-214.
21
Perruzi, S.; Kettunen, A.; Primicerio, R. and Kauric, G., 2007. Thermal shock induction of triploidy in Atlantic cod (Gadus morhua L.). Aquaculture research. Vol. 38, pp: 926-932.
22
Piferrer, F.; Beaumont, A.; Falguière, M.; Haffray, P. and Colombom, L., 2009. Polyploid fish and shellfish: Production, biology and applications to aquaculture for performance improvement and genetic containment. Aquaculture. Vol. 293, pp: 125-156.
23
Pradeep, P.J.; Srijaya, T.C.; Bahuleyan, A.; Renjithkumar, C.R.; Jose, D.; Papini, A. and Chatterji, A.K., 2012. Triploidy induction by heat-shock treatment in red Tilapia, caryologia: international journal of cytology. Vol. 65, No. 2, pp: 152-156.
24
Recoubratsky, A.; Gomelsky, B.I.; Emelyanova, O.V. and Pankratyeva, E.V., 1992. Triploid common carp produced by heat shock with industrial fish-farm technology. Aquaculture. Vol. 108, pp: 13-19.
25
Strunjak-Perovic, I.; Coz-Rakova, R. and Topic Povovic, N., 2003. Micronucleus occurrence in diploid and triploid rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum). Vet. Med. Czech. Vol. 48, pp: 215-219.
26
Seraki, K.; Kobayasi, H. and Nakamura, M., 1977. Size of Erythrocytes in the Diploid and Triploid Specimens of Carassius auratus langsdorfi. Japanese Journal of Ichthyology. Vol. 24, pp: 135-140.
27
Taylor, G.F.; Bozzolla, P.; Frenzl, B.; Matthew, C.; Hunter, D. and Migaud, H., 2014. Triploid Atlantic salmon growth is negatively affected by communal ploidy rearing during seawater grow-out in tanks. Aquaculture. Vol. 432, pp: 163-174.
28
Thorgaard, G.H.; Jazwin, M.E. and Stier, A.R., 1981. Polyploidy induced by heat shock in rainbow trout. Transactions of the American fisheries society. Vol. 110, pp: 546-550.
29
Thorgaard, G.H., 1983. Chromosome set manipulation and sex control in fish. 405-434. In: WH Hoar, DG Randall and EM Donaldson (eds) fish physiology, academic press, Newyork. USA.
30
Turan, F. and Guragac, R., 2014. Induction of triploidy with caffeine treatment in the African catfish (Clarias gariepinus). Iranian journal of fisheries sciences. Vol. 4, No. 13, pp: 1014-1020.
31
Uma, B. and Chandran, M.R., 2008. Induction of triploidy in Gymnocorymbus ternetzi (Boulengar). Research journal of fisheries and hydrobiology. Vol. 2, No. 3, pp: 41-47.
32
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر میکروکپسول های حاوی پپتید به عنوان جاذب تغذیه دو گونه ماهی زینتی آنجل (Pterophyllum scalare) و دیسکوس (Symphysodon aequifasciatus)
کاربرد موثرتر پروتئین نظیر استفاده از هیدرولیز پروتئینی به عنوان جزئی از جیره میتواند سبب بهبود کارائی جیره و بهبود شاخصهای رشد شود. تحقیق حاضر باهدف تغذیه دو گونه ماهی زینتی Pterophyllum scalareو Symphysodon aequifasciatus با هیدرولیز پروتئینی بافت ماهی کولی با استفاده از عصاره آناناس و پوشش دهی آن با استفاده از آلژینات سدیم 3 درصد و افزودن به میزان 1/5 و 3 درصد به جیره و ارزیابی شاخص های رشد و تغذیه در طی 60 روز انجام شد. برای تعیین سطح بهینه عصاره برای هیدرولیز مقایسه با آنزیم پروتئیناز K مقایسه صورت گرفت و با استفاده از روش بردفورد و SDS PAGE میزان پروتئین هیدرولیز شده بررسی گردید. هیدرولیز تهیه شده با استفاده از آلژینات سدیم پوشش دهی گردید و به جیره فرمول شده با نرم افزاز Winfeed اضافه و استفاده شد. نتایج نشان داد پروتئیناز سیستئین موجود در عصاره توانایی بالایی در هیدرولیز پروتئین، معادل 45 درصد دارد. نتایج ارزیابی کپسولاسیون با آلژینات سدیم نیز مشخص کرد که 70 درصد هیدرولیز تولید شده پوشش دهی شده است، در بررسی به روش بردفورد میزان جذب قرائت شده معادل 0/649 و غلظت پروتئین معادل 141/64 میکروگرم بر میلی لیتر ثبت شد. بیش ترین میزان نرخ رشد ویژه (SGR) در رابطه با ماهیان تغذیه شده با جیره حاوی 3 درصد میکروکپسول به ترتیب معادل 2/28 و 2/71 گرم برای آنجل و دیسکس مشاهده شد و این تیمار با سایر گروههای آزمایشی دارای اختلاف معنیداری بود (0/05>P). هم چنین کم ترین میزان ضریب تبدیل غذایی نیز در این گروه به ترتیب معادل 0/94 و 1/1 درصد محاسبه شد.
http://www.aejournal.ir/article_103819_c84c2ae7cb48c49e09210425fc1107d3.pdf
2019-12-22
257
264
هیدرولیز پروتئینی
ماهیان زینتی
Pterophyllum scalare
Symphysodon aequifasciatus
جاذب تغذیهای
مهدی
رضایی سیاهکوچه
m.rezaei71@gmail.com
1
ﮔﺮوه ﺷﯿﻼت، داﻧﺸﮑﺪه ﻋﻠﻮم و ﻓﻨﻮن درﯾﺎﯾﯽ، واﺣﺪ تهرانﺷﻤﺎل، داﻧﺸﮕﺎه آزاد اﺳﻼﻣﯽ، تهران، ایران
AUTHOR
ژاله
خوشخو
zhaleh_khoshkhoo@yahoo.com
2
ﮔﺮوه علوم و مهندسی صنایع غذایی، واﺣﺪ تهرانﺷﻤﺎل، داﻧﺸﮕﺎه آزاد اﺳﻼﻣﯽ، تهران، ایران
AUTHOR
نرگس
مورکی
nargess_mooraki@yahoo.com
3
ﮔﺮوه ﺷﯿﻼت، داﻧﺸﮑﺪه ﻋﻠﻮم و ﻓﻨﻮن درﯾﺎﯾﯽ، واﺣﺪ تهرانﺷﻤﺎل، داﻧﺸﮕﺎه آزاد اﺳﻼﻣﯽ، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
Cahu, C. and Zambonino-Infante, J., 2001. Substitution of live food by formulated diets in marine fish larvae. Aquaculture. Vol. 200, pp: 161-180.
1
Carvalho, A.P.; Escaffre, A.M.; Oliva Teles, A. and Bergot, P., 1997. First feeding of common carp larvae on diets with high levels of protein hydrolysates. Aquaculture International. Vol. 5, pp: 361-367.
2
Chong, A.S.C.; Hashim, R. and Ali, A.B., 2000. Dietary protein requirements for discus (Symphysodon spp.). Journal Aquaculture Nutrition. Vol. 6, pp: 275-278.
3
Chong, A.S.C.; Hashim, R. and Ali, A.B., 2002. Assessment of dry matter and protein digestibilities of selected raw ingredients by discus fish (Symphysodon aequifasciata) using in vivo and in vitro methods. Aquacult Nutr. Vol. 8, No. 3, pp: 229-238.
4
Coutinho, F.; Peres, H.; Guerreiro, I.; Pousão-Ferreira, P. and Oliva-Teles, A., 2012. Aug. Dietary protein requirement of sharpsnout sea bream (Diplodus puntazzo, Cetti 1777) juveniles. Aquaculture. Vol. 1, pp: 356-397.
5
Ergun, S.; Yigit, M. and Turker, A., 2003. Growth and feed consumption of young Rainbow throut (Oncorhynchus mykiss) exposed to different photoperiods. Journal of Aquacuture. Vol. 55, No. 2, pp: 132-138.
6
Erdogan, F.; Erdogan, M. and Gümüş, E., 2012. Effects of Dietary Protein and Lipid Levels on Growth Performances of Two African Cichlids (Pseudotropheus socolofi) and (Haplochromis ahli), Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 12, pp: 453-458.
7
Ergün, S.; Güroy, D.; Tekeşoğlu, H., Güroy, B. and Çelik, İ., 2010. Optimum dietary protein level for blue streak hap. Labidochromis caeruleus. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 10, pp: 27-31.
8
Jauncey, K., The effects of varying dietary protein level on the growth, food conversion, protein utilization and body composition of juvenile tilapias (Sarotherodon mossambicus). Aquaculture. Vol. 27, No. 1, pp: 43-54.
9
Kim, L.O. and Lee, S.M., 2005. Jan. Effects of the dietary protein and lipid levels on growth and body composition of bagrid catfish, Pseudobagrus fulvidraco. Aquaculture. Vol. 3, No. 1, pp: 323-329.
10
Kolkovski, S.; Czensny, S. and Dabrowski, K., 2000. Use of krill hydrolysate as a feed attractant for fish larvae and juveniles. Journal of World Aquaculture Society. Vol. 31, pp: 81-88.
11
Lee, S.M. and Kim, K.M., 2005. Effect of various levels of lipid exchanged with dextrin at different protein level in diet on growth and body composition of juvenile flounder (Paralichthys olivaceus). Journal Aquaculture Nutrition. Vol. 11, pp: 435-442.
12
Lee, K.J.; Powell, M.S.; Barrows, F.T.; Smiley, S.; Bechtel, P. and Hardy, R.W., 2010. Evaluation of supplemental fish bone meal made from Alaska seafood processing byproducts and dicalcium phosphate in plant protein based diets for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) Aquaculture. Vol. 302, pp: 248-255.
13
Lovell, R.T., 2000. Nutrition of ornamental fish. En: Bonagura, J., (Ed.), Kirk’s Current Veterinary Therapy XIII-Small Animal Practice. W.B. Saunders, Philadelphia, USA. pp: 1191-1196.
14
Mailliard, M.E.; Stevens, B.R. and Mann, G.E., 1995. Amino acid transport by small intestinal, hepatic, and pancreatic epithelia. Gastroenterology. Vol. 108, pp: 888-910.
15
Mohanta, K.N.; Mohanty, S.N.; Jena, J. and Sahu, N.P., 2009. A dietary energy level of 14.6 MJ kg− 1 and protein‐to‐energy ratio of 20.2 g MJ− 1 results in best growth performance and nutrient accretion in silver barb Puntius gonionotus fingerlings. Aquaculture nutrition. Vol. 1, No. 6, pp: 627-37.
16
Niroomand, M.; Sajadi, M.; Yahyavi, M. and Asadi, M., 2011. Effects of dietary betaine on growth, survival, body composition and resistance of fry rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) under environmental stress. isfj. Vol. 20, No. 1, pp :135-146.
17
Ozório, R.O.A.; Valente, L.M.P.; Correia, S.; Pousao Ferreira, P.; Damasceno‐Oliveira, A., Escorcio, C. and Oliva‐Teles, A., 2009. Protein requirement for maintenance and maximum growth of two‐banded seabream (Diplodus vulgaris) juveniles. Aquaculture Nutrition. Vol. 15, No. 1, pp: 85-93.
18
Pezzato, L.E.; Fracalossi, D.M.; de Borba, M.R. and Menoyo, D. 2003. Bautista, J.M., Growth, lipogenesis and body composition of piracanjuba (Brycon orbignyanus) fingerlings fed different dietary protein & lipid concentrations. Aquatic Living Resources. Vol. 16, No. 4, pp: 362-369.
19
Rodrigues, L.A., 2006. Kochenborger FJB. Influência do processamento da dieta no desempenho produtivo do acará bandeira (Pterophyllum scalare). Maringá. Vol. 28, No. 1, pp: 113-119.
20
Sales, J. and Janssens, G.P.J., 2003. Nutrient requirements of ornamental fish. Aquat Living Resour. Vol. 16, No. 6, pp: 533-540.
21
Sudagar, M.; Azari Takami, Gh.; Pnomarev, C.A.; Mahmoudzadeh, H.; Abedian, A. and Hosseini, S.A., 2005. The effects ofdifferent dietary levels of betaine and Downloaded methionine as attractant on the growth factor and survival rate of juvenile beluga (Huso huso), Iranian Scientific Fisheries Journal. Vol. 14, No. 2, pp: 41-50 (In Persian).
22
Tacon, A.G.I., 1987. The nutrition and feeding of farm fish and shrimp a training manual. The essential nutrients. FAO Brasilia Brazil. Vol. 1, 11 p.
23
Taheri, A.; Abedian Kenari, A.; Motamedzadegan, A. and Habibi Rezaie, A.M., 2010. Optimization of gold stripe sardine (Sardinella gibossa) protein hydrolysate using alcalase® 2.4L by RSM. CytA Journal of Food. pp: 1-7.
24
Zuanon, J.A.S.; Salaro, A.L.; Silveira Moraes, S.S.; de Oliveira-Alves, L.M.; Balbino, E.M. and Siqueira Araújo, E., 2009. Dietary protein and energy requirements of juvenile freshwater angelfish. Rev Bras Zootecn. Vol. 38, No. 6, pp: 989-993.
25
ORIGINAL_ARTICLE
اثر سم کشاورزی کلرپیریفوس (دورسبان) بر هورمون های جنسی و کیفیت گنادی ماهی قرمز نر (Carassius auratus)
کلرپیریفوس یک آفت کش ارگانوفسفره است که به عنوان کنترل کننده آفات در مزارع کشاورزی استفاده می شود. در این تحقیق اثرات این سم رایج (امولسیون 40/2) در کشاورزی بر ماهی قرمز مورد ارزیابی قرار گرفت. میزان 50 LC در 96 ساعت برابر با 83/2 میلی گرم در لیتر بود و با توجه به این شاخص، تیمارهایی با غلظت های 0، 0/25، 0/50 و 0/75 میلی گرم بر لیتر دورسبان (هرکدام با 3 تکرار) و به مدت 60 روز تحت تاثیر غلظت های فوق قرار گرفتند. سپس تاثیر آن بر هورمون های جنسی و کیفیت گنادی ماهی قرمز نر بررسی شد. میزان هورمون تستوسترون و 17-بتا استرادیول در تیمارهای مختلف سرم خون ماهی قرمز تحت تاثیر سم دورسبان به طور معنی داری نسبت به گروه شاهد کاهش یافت (0/05>P). حجم اسپرم دهی، طول دوره تحرک اسپرم، درصد تحرک اسپرم، تراکم اسپرم، اسپرماتوکریت در تیمارهایی که سم دریافت کردند نسبت به گروه شاهد به طور معنی داری کاهش یافت (0/05>P). هم چنین میزان شاخص گنـادوسوماتیک در تیمارهایی که سم دریافت کردند نسبت به گروه شاهد به طور معنی داری کاهش یافت (0/05>P). میزان هپاتوسوماتیک در تیمارهای محتوی سم نسبت به گروه شاهد نیز به طور معنی داری افزایش یافت (0/05>P). به طور کلی نتایج این تحقیق نشان داد که افزایش میزان سمیت دورسبان باعث کاهش هورمون های جنسی و کیفیت گنادی در ماهی قرمز نر می شود و بیش ترین تاثیر مربوط به تیمار 0/75 میلی گرم بر لیتر بود.
http://www.aejournal.ir/article_103839_3d104e02cb04bb1cf6a53bf4d0cc9593.pdf
2019-12-22
265
270
سم کلرپیریفوس (دورسبان)
هورمون های جنسی
ماهی قرمز
محمدرضا
ایمانپور
mrimanpoor53@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
مریم
موسوی
maryam.moosavi1711@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
Bayley, M.; Junge, M. and Baatrup, E., 2002. Exposure of juvenile guppies to three antiandrogens causes demasculinization and reduced sperm count in adult males.Aquatic Toxicology. Vol. 56, pp: 227-239.
1
Bernabo, I.; Gallo, L.; Sperone, E.; Tripepi, S.and Brunelli, E., 2011. Survival, development, and gonadal differentiation in Rana dalmatina chronically exposed to chlorpyrifos. J Exp Zool a Ecol Genet Physiol. Vol. 315, No. 5, pp: 314-327.
2
Burrati, F.M.; De Angelis, G.; Ricceri, L.; Venerosi, A.; Calamanderi, G.and Testai, E., 2011. Foetal and neonational exposure to chlorpyrifos: biochemical and metabolic alterations in the mouse liver at different developmental stages. Toxicology. Vol. 280, No. 3, pp: 98-108.
3
Butts, I.A.E.; Litvak, M.K. and Trippel, E.A., 2010. Seasonal variations in seminal plasma and sperm characteristics of wild-caught and cultivated Atlantic cod (Gadus morhua). Theriogenology. Vol. 73, pp: 873-885.
4
Davey, R.B.; Meisch, M.V. and Carter, F.L., 1976. Toxicity of five ricefield pesticides to the mosquitofish, Gambusia affinis, and green sunfish, Lepomis cyanellus, under laboratory and field condition in Arkansas. Environmental Entomology. Vol. 5, pp: 1053-1056.
5
Di Giulio, R.T. and Hinton, D.E., 2008. The Toxicology of Fishes. Taylor and Francis Group. 1101 p.
6
Fadakar, F.; Majazi Amiri, B.; Mirvaghefi, A.R. and Nematollahi, M.A., 2011. In vitro effects of diazinon on male reproductive tissue and sperm motilityof Caspian kutum (Rutillus frissi kutum). Research Journal of Environmental Toxicology. Vol. 5, No. 2, pp: 108-116.
7
Fitzpatrick, M.S.; Van Der Kraak, G. and Schreck, C.B., 1986. Profiles of plasma sex steroids and gonadotropin in coho salmon (Oncorhynchus kisutch) during final maturation. General and Comparative Endocrinology. Vol. 62, pp: 437-451.
8
Guzman, J.M.; Norberg, B.; Ramos, J.; Mylonas, C.C. and Manano, E.L., 2008. Vitellogenin, steroid plasma levels and spawning performance of cultured female Senegalese sole (Solea senegalensis). General and Comparative Endocrinology. Vol. 156, pp: 285-297.
9
Hedayati, A. and Arsham A., 2012. Endocrine Disruption Induced by Sub-Lethal Mercury Chloride on Hormone Indices of Seabream. World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 4, No. 2, pp: 125-130.
10
Hedayati, A. and Hosseini, A.R., 2012. Endocrine Disruptions Induced by artificial induction of Mercury on Seabream. World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 4, No. 2, pp: 125-130.
11
Eman, A.; Abd El, G.; Mohamed, M.M.; Kandiel, A. and Abbass, A., 2011. Impact of some organophosphorus insecticides on growth performance, fecundity and semen charachteristics in Nile Tilapia (Oreochromis niloticus). Lucrari Stiinifice seria Medicina Veterinara. Vol. 54, pp: 150-160.
12
Jorsaraei, S.G.; Beiki, A.A.; Yousef Nia Pasha, Y.R. and Alizade Navaei, R., 2005. The in vitro effects of hinosan and diazinon on human sperm parameters. J Babol Univ Med Sci. Vol. 7, No. 2, pp: 4-30 (in persian).
13
Joshi, S.C.; Mathur, R. and Gulati, N., 2007. Testicular toxicity of chlorpyrifos (an organophosphate pesticide) in albino rat. Toxicol Ind Health. Vol. 23, No. 7, pp: 439-44.
14
Matthiessen, P., 2003. Endocrine disruption in marine fish. Pure and Applied Chemistry. Vol. 75, pp: 2249-2261.
15
Orlando, E.F.; Binczik, G.A.; Thomas, P. and Guillette, J.L.J., 2003. Reproductive seasonality of the male Florida gar (Lepisosteus platyrhincus). General and Comparative Endocrinology. Vol. 131, pp: 356-371.
16
Singh, H., 1993. Effect of Malathion on sex reversal and steroidogenesis in Monopetrus. Albus Marine Environmental Research. Vol. 35, pp: 159-164.
17
Singh, P.B.; Singh, V. and Nayak, P.K., 2008. Pesticide residues and reproductive in different vertebrate from north India. Food Chem Toxicol. Vol. 46, No. 7, pp: 2533-2539.
18
Teles, M.; Pacheco, M. and Santos, M.A., 2003. Anguilla anguilla L. liver EROD, GST, erythrocytic nuclear abnormalities and endocrine responses to naphthalene and β-naphthoflavone. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 55, pp: 98-107.
19
Tiersch, T.R., 2001. Cryopreservation in aquarium fishes. Marine Biotechnology. Vol. 3, pp: 212-223.
20
Turner, E. and Montgomerie, R., 2002. Ovarian fluid enhances sperm movement in Arctic charr. Journal of Fish Biology. Vol. 63, pp: 1570-1579.
21
ORIGINAL_ARTICLE
به دام اندازی و شناسایی حشرات جنگل های حرا (Avicennia marina) توسط تله های سطلی رنگی، استوانه ای و کارت زرد چسبی (مطالعه موردی: شهرستان میناب)
گونه حرا (Avicennia marina) یکی از مهم ترین گونه های مانگرو است که در کرانه جنوبی ایران، اجتماعات گسترده ای را در پهنه های گلی بین جزر و مدی سواحل کم شیب تشکیل داده است. بنابراین تحقیق حاضر جهت به دام اندازی حشرات و آفات موجود در جنگل های حرا و شناسایی آن ها در شهرستان میناب انجام شد. تله های مورد استفاده شامل تله استوانه ای، سطلی-رنگی و کارت زرد چسبی بود. نصب تله ها در چهار ایستگاه شامل مناطق کرگان، کولغان، تیاب و خور نمکی انجام شد و دوره نمونه برداری از اردیبهشت تا اواخر شهریور سال 1396 بود. کل حشرات به دام افتاده درون تله ها 483 عدد بود که توسط متخصصین حشره شناس موسسه تحقیقات گیاه پزشکی کشور شناسایی شدند. گونه های مورد نظر شامل: Apis mellifera L. (Hym.: Apidae),Muscina prolapsa Fallen (Dip.: Muscidae),Oria musculosa (Hubner) (Lep.: Noctuidae),Agrotis daedalus (Lep.: Noctuidae),Lygephila sp. (Lep.: Erebidae), Helicoverpa armigera (Hubner) (Lep.: Noctuidae),Xylocopa latipes (Hym.: Apidae), Hypaetha schmidti (Col.: Carabidae),Mylabris variabilis (Col.: Meloidae), Polistes carolina (Hym.: Vespidae) بودند. لازم به ذکر است که این 10 گونه برای اولین بار از جنگل های حرا جنوب کشور گزارش می شوند. هم چنین نتایج بررسی تله ها نشان داد که در مجموع بین تله سطلی-رنگی (میانگین شکار 1/9 حشره)، کارت زرد چسبی (میانگین شکار 1/38 حشره) و تله استوانه ای (میانگین شکار 2/55 حشره) در ایستگاه های مختلف، تفاوت معنی داری در جلب حشرات موجود در جنگل های حرا وجود ندارد. هم چنین رنگ های سفید و نارنجی استفاده شده در تله های سطلی-رنگی دارای بالاترین کارایی برای جلب حشرات موجود در جنگل های حرا هستند.
http://www.aejournal.ir/article_103852_6192482479f697da86b897ea1df273db.pdf
2019-12-22
271
280
حرا
میناب
تله استوانه ای
تله سطلی-رنگی
کارت زرد چسبی
علی
جهانی
ajahani@ut.ac.ir
1
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، کرج، ایران
AUTHOR
سجاد
حسین زاده منفرد
s.monfared@ut.ac.ir
2
گروه جنگل شناسی و اکولوژی جنگل، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران
LEAD_AUTHOR
میثم
قاسمی
m.ghasemi@yahoo.com
3
کارشناس اداره کل محیط زیست استان هرمزگان
AUTHOR
انوشیروان
شیروانی
shirvany@ut.ac.ir
4
گروه جنگلداری و اقتصاد جنگل، دانشکده منابع طبیعی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
امامی، م.س.؛ کریم زاده اصفهانی، ج. و کالیس، ا.، 1389. پروانه زنبور مانندSynanthedon caucasica(Lepidoptera: Sesiidae) آفت جدید درختان چنار در اصفهان. فصلنامه گیاهپزشکی. دوره 4، شماره 2، صفحات 333 تا 338.
1
بریمانی ورندی، ح.؛ کالاشیان، م. و براری، ح.، 1389. مقایسه کارایی تکنیک های مختلف تله گذاری برای جمع آوری سوسک های چوب خوار Buprestidae و Cerambycidae. خلاصه مقالات نوزدهمین کنگره گیاه پزشکی ایران. جلد 1، 478 صفحه.
2
حاتمی، ب.؛ طلایی، ل.؛ رخشانی، ح.؛ مظاهری، ا. و اعتمادی، ن.، 1390. آفات مهم گیاهان فضای سبز (درختان، درختچه ها، گیاهان علفی و پوششی). انتشارات سازمان شهرداری ها و دهیاری های کشور. چاپ اول. 118 صفحه.
3
ساکنین چلاو، ح.؛ اسلامی، ب.؛ ثمین، ن.؛ ایمانی، س.؛ شیردل، ف. و هوسکاری، م.، 1387. معرفی مهم ترین درختان و درختچه های میزبان سوسک های چوب خوار در مناطق مختلف ایران و شناسایی بعضی دشمنان طبیعی آن ها. فصلنامه علمی پژوهشی گیاه و زیست بوم. شماره 16، صفحات 27 تا 45.
4
سروش، م.ج.؛ کمالی، ک.؛ استوان، ه.؛ شجاعی، م. و فتحی پور، ی.، 1389. مقایسه جلب کنندگی تله های مختلف در جلب مگس میوه زیتون Bactrocera oleae (Dipter: Tephritidae). نشریه آفات و بیماری های گیاهی. جلد 78، شماره 2، صفحات 275 تا 287.
5
صدیقی، ن.؛ طالبی، ع.ا.؛ شوشتری، ر. و سما، ج.ف.، 1386. بررسی فون سوسک های شاخک بلند(Col.: Cerambycidae) در شیراز و حومه. یافته های نوین کشاورزی. سال 1، شماره 4، صفحات 333 تا 348.
6
عبایی، م. و عسکری. ح.، 1393. حشره شناسی جنگل: آفات درختان و درختچه های جنگلی، جنگل کاری ها، فضای سبز شهری، مناطق بیابانی و کویری ایران. انتشارات علم کشاورزی ایران. چاپ اول. 806 صفحه
7
عسکری، ح.؛ آل منصور، ح.؛ زرگران، م.ر. و قاضی، م.، 1391. بررسی اثر رنگ تله فرومونی و محل نصب آن ها در میزان شکار جوانه خوار بلوط Tortrix viridana. مجله تحقیقات حمایت و حفاظت جنگل ها و مراتع ایران. سال 10، شماره 1، صفحات 1 تا 9.
8
عسکری، ح.؛ زرگران، م.ر.؛ آل منصور، ح.؛ قاضی، م.؛ بریمانی، م.ح.؛ تبریزیان، م. و عجم حسنی، م.، 1388. بررسی اثر شکل تله و پخش کننده فرمون جنسی در شکار پروانه های نر جوانه خوار بلوط Tortrix viridana (Lep.: Tortricidae). مجله آفات و بیماری های گیاهی. دوره 77، پیاپی 87، صفحات 33 تا 50.
9
غباری، ح.، 1391. بررسی فونستیک و تنوع گونه ای سوسک های چوب خوار خانواده Buprestidae Leach, 1815 در استان کردستان. پایان نامه مقطع دکتری در رشته گیاه پزشکی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران. 171 صفحه.
10
غباری، ح.؛ نوذری، ج.؛ الهیاری، و. و کالاشیان، م.، 1393. بررسی ساختار تنوع گونه ای سوسک های چوب خوار خانواده Buprestidae در جنگل های استان کردستان. مجله دانش گیاه پزشکی ایران. دوره 45، شماره 1، صفحات 101 تا 109.
11
فرآشیانی، م.ا.؛احتشام حسینی،م.؛سیدیرشتی،س.؛ منیری، و.ر. و صلاحی، ع.، 1387. بررسی زیست شناسی سوسک شاخک بلند سارتا Aeolesthes sarta در شرایط طبیعی تهران. مجله تحقیقات حمایت و حفاظت جنگل ها و مراتع ایران. سال 3، شماره 1 (پیاپی 5)، صفحات 41 تا 56.
12
فلاحزاده، م.؛ شجاعی، م.؛ تبریزیان، م. و استوان، ه.، 1379. اثر رنگ تله، نوع تله، دز فرموله شده در کپسول فرومون و ارتفاع نصب تله در کارایی تله های فرومونی پروانه کرم سیب (.Cydia pomonella (L. مجله علوم کشاورزی. دوره 6, شماره 1، صفحه 77 تا 90.
13
کیادلیری، ه.؛ استوان، ه.؛ عبایی، م. و یزدانفر، ا.، 1384. بررسی زیست رفتاری Erannis defoliria C. و دشمنان طبیعی آن در جنگل های غرب مازندران. مجله علوم کشاورزی. سال 11، شماره 1، صفحه 145 تا 159.
14
عرفانی، م.، 1386. بررسی ساختار و مقایسه تغییرات وسعت رویشگاه مانگرو در تالاب بین المللی خلیج گواتر و هور باهو در استان سیستان و بلوچستان به منظور گزینش زون حفاظتی. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران.
15
لقایی، ح.؛ منوری، م. و رییسی، ب.، 1392. برنامه ریزی و زون بندی ذخیره گاه زیست کره حرا براساس معیارهای بین المللی (با تأکید بر جزیره قشم) با استفاده از .GIS مجله انسان و محیط زیست. شماره 8، صفحات 30 تا 39.
16
حجاریان، م.، 1384. بررسی تغییرات کمی جنگل های مانگرو منطقه قشم با استفاده با استفاده از عکس های هوایی و تصاویر ماهواره ای در یک دوره 40 ساله. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده منابع طبیعی. دانشگاه تهران.
17
دانه کار، ا.، 1385. طرح مدیریت و توسعه جنگل های مانگرو در استان هرمزگان. مهندسین مشاور پایداری طبیعت و منابع. جلد اول، اداره کل منابع طبیعی استان هرمزگان، 222 صفحه.
18
صادقی، ا.، 1384. بررسی روند تغییرات سطح و تراکم جنگل های مانگرو در حوزه دریای عمان با استفاده از عکس های هوایی (منطقه جاسک و سیریک). پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه آزاداسلامی واحد علوم تحقیقات.
19
صفاایسنی، ه.، 1385. مدیریت زیست محیطی جنگل های مانگرو حوزه تیاب و کلاهی براساس ساختار و تغییرات رویشگاه. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم تحقیقات اهواز.
20
صفیاری، ش. و نصوری، م.، 1387. توسعه جنگل های مانگرو سازمان جنگل ها، مراتع و آبخیزداری کشور، اداره کل منابع طبیعی استان هرمزگان. 498 صفحه.
21
عرفانی، م.؛ دانه کار، ا.؛ نوری، غ. و اردکانی، ط.، 1389. بررسی عوامل موثر بر تغییرات جهانی وسعت جنگل های مانگرو. چهارمین کنگره بین المللی جغرافیدانان جهان اسلام (ICIWG). ایران، زاهدان. صفحات 1 تا 15.
22
حسین زاده منفرد، س.؛ پورمجیدیان، م.ر.؛ عسکری، ح.؛ عبایی، م. و شیروانی، ا.، 1396. بررسی تله های مختلف در شکار آفات چوب خوار درختان چنار (Platanus orientalis) در شهر کرج. مجله جنگل ایران. شماره 4، صفحات 25 تا 37.
23
Ahmed, E.A. and Abdel-Hamid, K.A., 2007. Zonation Pattern of Avicennia marina andRhizophora mucronata along the Red Sea Coast, Egypt. World Applied Sciences Journal. Vol. 2, No. 4, pp: 283-288.
24
Dejan, V.S. and Srećko, B.Ć., 2011. The Diversity of Noctuid Moths (Lepidoptera: Noctuidae) in Serbia. Acta zool. bulg. Vol 63, No. 1, pp: 47-60.
25
Essa, S.; Loughland, R.; Khogali, M.E. and Darwish, A., 2006. Overlay analysis of GIS Layers from an Integrated Geospatial Database to Evaluate Changes on AL Sammalyah Island. available online: [http://www.gisdevelopment.net/ roceedings/mapmiddleeast/2006/natural%20resource%20management/mm06nat_35.htm]
26
Hosking, E.J.; Bach, C.S.; Applegate, R.J.; Karfs, R.A. and Wallace, J.F., 2001. Mangrovemonitoring using sequences of Landsat imagery in the MaryRiver wetlands. Geoscienceand Remote Sensing Symposium. Vol. 5, pp: 2241-2243.
27
Giri, C.; Ochieng, E.; Tieszen, L.; Zhu, Z.; Singh, A.; Loveland, T. and Duke, N., 2010. Status and Distribution of Mangrove Forests of the World Using Earth Observation Satellite Data, Global Ecology and Biogeography. Vol. 20, pp: 154-1594.
28
Kirui, K.B.; Kairo, J.G.; Bosire, J.K.; Viergever, M.; Rudra, S.; Huxham, M. and Briers, R.A., 2012. Mapping of Mangrove Forest Land Cover Change along the Kenya Coastline Using Landsat imagery. Ocean and Coastal management. Vol. 54, pp: 1-6.
29
Polidoro, B.A.; Carpenter, K.E.; Collins, L.; Duke, N.C.; Ellison, A.M.; Ellison, J.C.; Farnsworth, E.J.; Fernando, E.S.; Kathiresan, K.; Koedam, N.E.; Livingstone, S.R.; Miyagi, T.; Moore, G.E.; Nam, V.N.; Ong, J.E.; Primavera, J.H.; Salmo, S.G.; Sanciangco, J.C.; Sukardjo, S.; Wang, Y. and Hong Yong, J.W., 2010. The Loss of Species: Mangrove Extinction Risk and Geographic Areas of Global Concern. PLoS One. Vol. 5, pp: 1-10.
30
FAO. Food and Agricultural Organization. 2007. Mangroves of Asia 1980-2005. Forest Resources Assessment Programme Working NO.137, Rome.148P. Available at: [WWW.Fao.org/forestry/site/mangrove/statistics].
31
Barimani Varandi, H.; Kalashian, M.Y. and Barari, H., 2009. Contribution to the knowledge of the Jewel beetles (Coleoptera: Buprestidae) fauna of Mazandaran province of Iran. Caucasian Entomological Bulletin. Vol. 5, No. 1, pp: 63-68.
32
Bellamy, C.L., 2000. Buprestidae (Coleoptera: Buprestoidea). Cimbebasia Memoir. Vol. 9, pp: 185-191.
33
Furniss, R.L. and Carolin V.M., 1977. Western forest insects. U.S. Dep. Agric. Forest Service Misc. Pub 1. No. 1339. Washington DC.
34
Gardiner, L.M., 1957. Deterioration of fire-killed pine in Ontario and the causal wood-boring beetles. Canadian Entomologist. Vol. 89, pp: 241-263.
35
Jozeyan, A.; Vafaei shoushtari, R. and Askary, H., 2015. Oaks Wood borer beetle and relationship with dryness oak trees in Ilam Province. Trends in life Sciences. Vol. 4, pp: 273 -280.
36
Kathiresan, K. and Bingham, B.L., 2001. Biology of mangroves and mangrove Ecosystems. Advances in Marine Biology. Vol. 40, pp: 81-251.
37
Katsoyannos, P., 1992. Olive pests and their control in the Near east. Banki Phytological Institute, Athens, Greece. 178 p.
38
Lhoir, J.; Fagot, J.; Thieren, Y. and Wilson, G., 2003. Efficacite du piegeage, par les methods classiques, des Coleopteres saproxyliques en region wallone (Belgique). Notes fauniques de Gembloux. Vol. 50, pp: 49-61.
39
Pickett, K.M.; Carpenter, J.M. and Wheeler, W.C., 2006. Systematics of Polistes (Hymenoptera: Vespidae), whit a phylogenetic consideration of Hamiltons haplodiploidy hypothesis. Journal of Ann. Zool. Fennici. Vol. 43, pp: 390-406.
40
Lund, H.G., 2006. Definition of forest, Deforestation, Afforestation. Gainesville, VA: Forest Information Services.
41
Mitchell, A.; Mitter, C. and Regier, J.C., 2006. Systematics and evolution of the cutworm moths (Lepidoptera: Noctuidae): evidence from two protein-coding nuclear genes. Syst. Entomol. Vol. 31, pp: 21-46.
42
Moritz, R.; Hartel, S. and Neumann, P., 2005. Global invasions of the western honeybee (Apis mellifera) and the consequences for biodiversity. Journal of Écoscience. Vol. 12, No. 3, pp: 289-301.
43
Matheus, R.W. and Matheus, J.R., 1983. Malaise traps: The Townes model catches more insects. Contributions of the American Entomological Institute. Vol. 20, pp: 928-934.
44
Montgomery, M.E. and Wargo, P.M., 1983. Ethanol and other host-derived volatiles as attractants to beetles that bore into hardwoods. Journal of Chem Ecol. Vol. 9, No. 2, pp: 181-90.
45
Mushtaq, A.; Iqbal Arif, M. and Zahoor, A., 2003. Susceptibility of Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae) to new chemistries in Pakistan. Crop Protection. Crop Protection. Vol. 22, No. 3, pp: 539-544.
46
Oliver, J.B.; Fare, D.; Youssef, N. and Klingeman, W., 2004. A survey trap to monitor adult flat headed borer activity in nurseries // M. E. Lewis [ed.], Proc. 26th Ann. University-Wide Res. Sympos., Teennessee State University 6-8 April, 2004. Nashville TN htt://www.tnstate. edu / research/ researchsymp2004/H-1. Pdf. pp. H-1.
47
Ozdikmen, H., 2008. The Longicorn Beetles of Turkey (Coleoptera: Cerambycidae) Part II Marmara Region. Munis Entomology & Zoology. Vol. 3, No. 1, pp: 7-152.
48
Ozbek, H. and Szaloki, D., 1998. A contribution to the knowledge of the Meloidae (Coleoptera) fauna of Turkey along with new records. Journal of Zoology. Vol. 22, pp: 23-40.
49
Patitucci, L.D.; Mulier, P.R.; Olea, M.S. and Mariluisi, J.C., 2013. Muscidae (Insecta: Diptera) of Argentina: revision of Buenos Aires province fauna, with a pictorial key to species. Zootaxa. Vol. 3702, No. 4, pp: 301-347.
50
Pekarsky, O., 2013. Taxonomic and morphological survey of the Lygephila lusoria (Linnaeus, 1758) species-group with description of a new species (Lepidoptera, Erebidae, Toxocampinae). Journal of Zookeys. Vol. 351, pp: 49-81.
51
Sakalian, V. and Langourov, M., 2004. Colour trap a method for distributional and ecological investigations of Buprestidae (Coleoptera). Acta Societatis Zoologicae Bohemicae. Vol. 68, pp: 53–59.
52
Sakenin, H.; Samin, N.; Moemen Beitollahi, S.; Ezzatpanah, S.; Havaskary, M.; Rastegar, J.; Valizadeh, A. and Shakouri, M.J., 2011. A study on the longhorn beetles (Coleoptera: Cerambycidae) from northwestern Iran. Calodema. Vol. 143, pp: 1-19.
53
Solomon Raju, A.J. and Purnachandra Rao, S., 2006. Nesting habits, floral resources and foraging ecology of large carpenter bees (Xylocopa latipes and Xylocopa pubescens) in India. Journal of Current science. Vol. 90, pp: 1210-1217.
54
Wermelinger, B.; Duelli, P. and Obrist, M.K., 2002. Dynamics of saproxylic beetles (Coleoptera) in wind throw areas in alpine spruce forests. Forest Snow Landscape Research. Vol. 77, pp: 133-148.
55
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی و شناسایی برخی حشرات زیان آور کاخ موزه نیاوران
موزه ها به عنوان محل امنی برای نگه داری آثار تاریخی، طبیعی و فرهنگ های ملی و قومی، از مهم ترین منابع اطلاعات فرهنگی، علمی، سیاسی، اقتصادی و تاریخی جوامع به شمار می آیند و لذا حفظ و نگه داری از آن ها از اهمیت به سزایی برخودار است. انهدام و فساد اشیاء موزه ای می تواند ناشی از عوامل فیزیکی، شیمیایی، بیولوژیکی و یا تحت تأثیر عوامل بیرونی باشد که اثرات مخربی بر این آثار برجا می گذارند. در این میان حشرات انباری از اهمیت به سزایی برخوردارند. متأسفانه اگر اشیای تاریخی به آفات انباری مبتلا شوند، شانس دوبارهای برای خلق شدن ندارند و هر خسارت و صدمه ای به آن ها برگشت ناپذیر است. بنابراین مطالعه و بررسی عوامل خسارت زا بر اموال و اقلام موجود در موزهها جزء جدانشدنی از مبحث آفات موزه ای است. پژوهش حاضر با هدف شناسایی آفاتی که به کلکسیون های موزه آسیب وارد می کنند، در کاخ موزه نیاوران در شهر تهران انجام شد. حشرات موجود در سه مجموعه کاخ موزه نیاوران شامل کتابخانه سلطنتی فرح پهلوی، کوشک احمد شاهی و کاخ صاحبقرانیه مورد بررسی و مطالعه قرار گرفتند. حشرات به دقت از روی کلیه وجوه اجناس موجود در ساختمان ها و همین طور از سطح زمین با استفاده از قلم مو، آسپیراتور، کارت های چسبنده و تله های فرومونی جمع آوری شدند. حشرات جمع آوری شده جهت شناسایی به آزمایشگاه حشره شناسی دانشگاه آزاد اسلامی واحد ورامین پیشوا منتقل شدند. اغلب نمونهها متعلق به سوسک های خانواده های Bostrychidae، Dermestidae و Ptinidae و پروانه های خانواده Tineidae بودند. سوسک های Gibbium psylloides (Czempinski, 1778)، خانواده Bostrychidae و پروانه های Tineola bisselliellaبرای اولین بار از کاج موزه نیاوران گزارش شدند.
http://www.aejournal.ir/article_103861_4410b883b7d6319ab0d3e428d1538ebb.pdf
2019-12-22
281
288
آفات موزه
کاخموزه نیاوران
Dermestidae
Ptinidae
Tineola bisselliella
Gibbium psylloides
شیما
شهرابی
shimashahrabi.58@gmail.com
1
گروه باستان شناسی، دانشکده ادبیات و علوم انسانی، واحد ورامین-پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، پیشوا، ایران
AUTHOR
ثمین
صدیق
samin.seddigh@gmail.com
2
گروه گیاه پزشکی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین-پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
LEAD_AUTHOR
بیتا
سودایی
bita.sodaei@gmail.com
3
گروه باستان شناسی، دانشکده ادبیات و علوم انسانی، واحد ورامین-پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، پیشوا، ایران
AUTHOR
باب الحوائجی، ف. و ابوالفتحی، ز.، 1394. ارزیابی مدیریت خظر در موزه های سازمان میراث فرهنگی، صنایع دستی و گردشگری. فصلنامه گنجینه اسناد. دوره 25، شماره 2، صفحات 78 تا 98.
1
باقری زنوز، ا.، 1392. آفات و عوامل زیان آور انباری و مدیریت کنترل آن ها: بیواکولوژی حشرات، کنه ها و میکروارگانیسم ها. انتشارات دانشگاه تهران. 476 صفحه.
2
راحت ورنوسفادرانی، ز.، 1363. مراقبت و نگه داری اشیاء موزهای (ترجمه). گروه آموزش و انتشارات کل موزهها. 121 صفحه.
3
عابدی، ع.، 1371. نقش عوامل بیولوژیک در فرسایش کاغذ (ترجمه). کتابخانه مرکزی آستان قدس رضوی. 102 صفحه.
4
قهری، م. و روحی، ص.، 1391. عوامل میکروبی آسیبرسان به مواد آرشیوی و کتابخانه ای، سازمان اسناد و کتابخانه ملی جمهوری اسلامی ایران، تهران. 225 صفحه.
5
نفیسی، ن.، 1389. موزه داری. انتشارات سازمان مطالعه و تدوین کتب علوم انسانی دانشگاه ها (سمت). 162 صفحه.
6
Beal, J.R., 1998. Taxonomy and biology of Nearctic species of Anthrenus (Coleoptera: Dermestidae). Transactions of the American Entomological Society. Vol. 124, pp: 271-332.
7
Binker, G.; Brücker, G.; Flohr, E.; Huckfeldt, T.; Nold, Z.; Parisek, L.; Rehbein, M. and Wegner, R., 2014. Praxis-Handbuch Holzschutz Beurteilen, Vorbereiten, Ausführen; Rudolf Müller Verlag: Köln, Germany. (In German)
8
Borowski, J. and Wêgrzynowicz, P., 2007. World catalogue of Bostrichidae (Coleoptera). Wydawnictwo Mantis, Olsztyn, Poland. 247 P.
9
Borror, D.J.; Triplehorn, C.A. and Johnson, N.F., 1989. An introduction to study of Insects, Sixth Edition. Philadelphia: Saunders College Pbu. 875 P.
10
Brimblecombe, P. and Querner, P., 2014. Webbing clothes moth catch and the management of heritage environments. International Biodeterioration & Biodegradation. Vol. 96, pp: 50-57.
11
Catts E.P. and Goff, M.L., 1992. Forensic entomology in criminal investigations. Annual Review of Entomology. Vol. 37, pp: 253-272.
12
Cox, P.D. and Pinniger, D.B., 2007. Biology, behaviour and environmentally sustainable control of Tineola bisselliella (Hummel) (Lepidoptera: Tineidae). Journal of Stored Products Research. Vol. 43, pp: 2-32.
13
Crowson, R.A., 1981. The Biology of Coleoptera. Academic Press, New York, London, etc. 802 P.
14
Cumberland, B., 2009. Museum collection integrated pest management plan. National Park Service, Washington D.C., U.S. 74 P.
15
Freeman, J.A., 1958. Infestation of stored products in Iran. Ministry of Agriculture, Fisheries and Food (MAFF) and Central Treaty Organization, London. 84 P.
16
Fohrer, F.; Basle, K. and Daniel, F., 2006. Problématique de l’infestation des colles de rentoilage des peintures de chevalet par le Stegobium paniceum (L.). Support Tracé. Vol. 6, pp: 78-85. (In French)
17
Gleeson, P.; Sparrow, L.G. and Ward, C.W., 1976. Aryl acylamidase activity in larvae of the webbing clothes moth, Tineola bisselliella. Comparative Biochemistry and Physiology. Part B. Vol. 53, pp: 187-190.
18
Glory, D., 1998. Mould and insect attack in collections, conservation and care of collections, Western Australian Museum, IURO.
19
Haack, R.A., 2006. Exotic bark- and wood-boring Coleoptera in the United States: recent establishments and interceptions. Canadian Journal of Forest Research. Vol. 36, pp: 269-288.
20
Hava, J. and Kadej, M., 2014. Contribution to knowledge of the Dermestidae (Coleoptera) from afghanistan with description of three new species. Florida Entomologist. Vol. 94, pp: 1414-1423.
21
Herrmann, A.; Háva, J. and Fallahzadeh, M., 2010. Contribution to the knowledge of Anthrenini from Iran (Coleoptera: Dermestidae). Journal of the Entomological Research Society. Vol. 12, pp: 113-115.
22
Hinton, H.E., 1956. The larvae of the species of Tineidae of economic importance. Bulletin of Entomological Research. Vol. 47, pp: 251-346.
23
Jacobs, S., 2013. Spider Beetles. Penn State: College of Agricultural Sciences. Accessed October 10, 2018. Last modified December 2013, http://ento.psu.edu/extension/ factsheets/spider-beetles.
24
Kadej, M.; Jaroszewicz, S. and Tarnawski, D., 2013. Morphology of Mature Larvae of Three Species of the Genus Anthrenus (Dermestidae: Megatominae: Anthrenini) With comparisons to related species. Annals of the Entomological Society of America. Vol. 13, pp: 706-718.
25
Karami, Z.; Bagheri Zenooz, E. and Zhantiev, R.D. 2004. Notes on the Anthrenus species (Col.: Dermestidae) in Fars province. Proceedings of 16th Iranian Plant Protection Congress, 2004, 27 August, 1September, Tabriz, Iran. Ministry of Agriculture, Tehran.
26
Kempe, K., 2009. Holzschädlinge: Vermeiden, Erkennen, Bekämpfen; Fraunhofer-IRB-Verlag: Stuttgart, Germany. (In German)
27
Krüger-Carstensen, B. and Plarre, R., 2011. Outdoor trapping and genetical characterization of populations of the webbing clothes moth Tineola bisselliella (Lepidoptera: Tineidae) in the broader area of Berlin. Journal of Entomological and Acarological Research. Vol. 43, pp: 129-135.
28
Liu,L.Y., 2010. New records of Bostrichidae (Insecta: Coleoptera, Bostrichidae, Bostrichinae, Lyctinae, Polycaoninae, Dinoderinae, Apatinae). Mitteilungen der Münchner Entomologischen Gesellschaft. Vol. 100, pp: 103-117.
29
Modarres Awal, M., 1997. Dermestidae. In List of Agricultural Pests and their Natural Enemies in Iran. Edited by Modarres Awal, M., Ferdowsi University Press, Mashhad, Iran.
30
McCaig, I. and Ridout, B., 2012. Timber-Practical Building Conservation; English Heritage: Swindon, UK.
31
Mertins, J.W., 1981. Life History and Morphology of the Odd Beetle, Thylodrias contractus. Annals of the Entomological Society of America. Vol. 74, pp: 576-581.
32
Mroczkowski, M., 1962. Dermestidae (Coleoptera) from the Kazakh SSR [Dermestidae (Coleoptera) Kazachskiej SRR]. Annales Zoologici. Vol. 20, pp: 229-259.
33
National Park Service, 1998. Biological Infestations. NPS Museum Handbook, Part I, Chapter 5, Part I. 94 P.
34
Noldt, U.; Michels, H. 2007. Holzschädlinge im Fokus Alternative Maßnahmen zur Erhaltung historischer Gebäude; Beiträge der internationalen Tagung im LWL Freilichtmuseum Detmold/Westfälisches Landesmuseum für Volkskunde; Merkur Verlag: Detmold, Germany. (In German)
35
Peacock, E.R., 1993. Adults and larvae of hide, larder and carpet beetles and their relatives (Coleoptera: Dermestidae) and of derodontid beetles (Coleoptera: Derodontidae). Handbooks for the Identification of British Insects. Vol. 5, No. 3, 144 P.
36
Petersen, G., 1968. Beitrag zur Kenntnis der ostmediterranen Tineiden (Lepidotera: Tineidae, exclus. Nemapogoninae). Acta entomologica Bohemoslovaca. Vol. 65, No. 1, pp: 52-66.
37
Pierce, F.N. and Metcalfe, J.W., 1935. The Genitalia of the Tineid Families of the Lepidoptera of the British Islands. Oundle, UK. 116 P.
38
Pinniger, D., 2011. New Developments in Pest Management for Collections in Museums and Historic Houses. In Proceedings of the 7th International Conference on Urban Pests; Ouro Preto, Brazil. pp: 7-10.
39
Plarre, R. and Krüger-Carstensen, B., 2011. An attempt to reconstruct the natural and cultural history of the webbing clothes moth Tineola bisselliella Hummel (Lepidoptera: Tineidae). Journal of Entomological and Acarological Research. Vol. 43, pp: 83-93.
40
Querner, P., 2009. Museums schädlinge und die Umsetzung der integrierten Schädlingsbekämpfung in Wiener Museen-ein erster Überblick. Mitteilungen der Deutschen Gesellschaft für Allgemeine und Angewandte Entomologie. Vol. 17, pp: 231-233. (In German)
41
Querner, P., 2012. Museums schädlinge und die Umsetzung des integrierten Schädlingsmanagements (IPM) in Berliner Museen. Mitteilungen der Deutschen Gesellschaft für Allgemeine und Angewandte Entomologie. Vol. 18, pp: 545-548. (In German)
42
Querner, P., 2015. Insect Pests and Integrated Pest Management in Museums, Libraries and Historic Buildings. Insects. Vol. 6, pp: 595-607.
43
Querner, P., 2016. Linking Webbing clothes moths to infested object or other food source in museums. Studies in Conservation. Vol. 61, No. 1, pp: 111-117.
44
Querner, P.; Kimmel, T.; Fleck, S.; Götz, E.; Morelli, M. and Sterflinger, K., 2013. Integriertes Schädlings management (IPM) im Hinblick auf den Depotumzug nach Himberg; Technologische Studien, Kunsthistorisches Museum Wien, Sonderband Depot 9/10; Kunsthistorisches Museum: Vienna, Austria, pp. 63-80. (In German)
45
Rai, K. and Chatterjee, P.N., 1963. Studies on the morphology and taxonomy of Indian Bostrychidae, v. A revision of the Indian species of Heterobostrychus LESNE (Coleoptera: Bostrychidae). Indian Forest Records (N.S.). Vol. 10, No. 10, pp: 205-219.
46
Robinson, G.S. and Nielsen, E.S., 1993. Tineid Genera of Australia. Monographs on Australian Lepidoptera 2. CSIRO Publications, Melbourne, Australia. 344 P.
47
Roskov, Y.; Kunze, T.; Orrell, T., Abucay, L.; Paglinawan, L.; Culham, A.; Bailly, N.; Kirk, P.; Bourgoin, T.; Baillargeon, G.; Decock, W.; De Wever, A. and Didžiulis, V., 2014. Species 2000 & ITIS Catalogue of Life, 2014 Annual Checklist. Species 2000: Reading, UK. Läst 26 maj 2014.
48
Shahrabi, S.; Seddigh, S.; Sodaie, B. and Kadej, M., 2018. Dermestidae (Insecta: Coleoptera) of Niavaran Museum with a new record for Iran. Journal of Insect Biodiversity and Systematics. Vol. 4, No. 2, pp: 123-129.
49
Strang, T., 1993. Museum Pest Management, Student Course Notes, Copyright 1992, Canadian Conservation Institute, Ottawa, Canada.
50
Sutter, H.P., 2002. Holzschädlinge an Kulturgütern erkennen und bekämpfen: Handbuch für Denkmalpfleger, Restauratoren, Konservatoren, Architekten und Holzfachleute; Haupt Verlag: Bern, Switzerland. (In German)
51
Veer, V.; Prasad, R. and Rao, K.M., 1991. Taxonomic and Biological Notes on Attagenus and Anthrenus spp (Coleoptera: Dermestidae) Found Damaging Stored woollen Fabrics in India. Journal of Stored Products Research. Vol. 27, No. 3, pp: 185-198.
52
Ward, C.W., 1972. Diversity of proteases in the keratinolytic larvae of the webbing clothes moth, Tineola bisselliella. Comparative Biochemistry and Physiology- Part B. Vol. 42, pp: 131-135.
53
Waterhouse, D.F., 1958. Wool digestion and mothproofing. In: Advances in pest control research. Edited by Metcalf, R.L. vol. 2, New York, USA. pp: 207-262.
54
Weidner, H. and Sellenschlo, U., 2003. Vorratsschädlinge und Hausungeziefer: Bestimmungstabellen für Mitteleuropa; Spektrum Akademischer Verlag: Heidelberg, Berlin. (In German)
55
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی میزان باقی مانده آفت کش ها (استامی پراید، دیازینون، ایمیداکلوپرید، پریمیکارب) در محصول گوجه فرنگی گلخانه ای (واریته ازمیر) در فارس
امروزه با توجه به روند صعودی افزایش جمعیت و بحث امنیت غذایی، توسعه و ترویج محصولات گلخانه ای از اولویت های اجرایی وزارت جهاد کشاورزی محسوب می شود که اجرای این امر با افزایش بی رویه مصرف نهاده های شیمیایی مواجه شده است و با توجه به اهمیت محصولات خام کشاورزی به خصوص گوجه فرنگی که یکی از اصلی ترین محصول سبد خانوار ایرانی محسوب شده و به طور عمومی مصرف تازه خوری دارد، اهمیت توجه به میزان باقی مانده آفت کش ها در محصولاتخام کشاورزی را صد چندان می کند چرا که در بسیاری موارد عدم استفاده از آفت کش های بیولوژیک و کم خطر، عدم رعایت دوره کارنس آفت کش هاو مصرف بی رویه و غیراصولی آن ها باعث بروز اثرات زیان بار آفت کش ها شده و خطرات زیست محیطی را به همراه دارد. از آن جایی که در گلخانه ها جهت مبارزه با آفات،حشره کش های دیازینون (EC 60%)، ایمیداکلوپرید (SC 35%)، پریمیکارب (WP 50%) و استامی پراید (SP 20%) مورد استفاده قرار می گیرند. در این تحقیق میزان باقی مانده سموم ذکر شده در محصول گوجه فرنگی (Solanum lycopersicum) واریته ازمیر، در روزهای مختلف پس از استفاده، مورد بررسی قرار گرفته است. در این تحقیق نمونه برداری محصول تحت اثر آفت کش های استامی پراید، دیازینون، ایمیداکلوپرید، پریمیکارب قرار گرفته بود، انجام پذیرفت. در این مرحله برای تعیین روند کاهش سم در روزهای مختلف پس از سمپاشی، نمونه برداری در بازه های زمانی 2، 5، 7، 10، 14، 17 و 21 روز پس از سمپاشی صورت گرفت. استخراج باقی مانده سموم از نمونه ها توسط حلال استونیتریل صورت گرفت و پس از خالص سازی ماده استخراج شده، میزان آفت کش با استفاده از دستگاه کروماتوگرافی مایع با کارائی بالا مجهز به آشکارساز فرا بنفش و مرئی (HPLC-DAD) مورد سنجش قرار گرفت. نتایج نشان دادند که میزان باقی مانده آفت کش های استامی پراید، دیازینون، ایمیداکلوپرید، پریمیکارب در گوجه فرنگی با نزدیک شدن به دوره کارنس سیر نزولی دارد.
http://www.aejournal.ir/article_103902_45209ea007f9e4e4bf3aad95b8d87358.pdf
2019-12-22
289
296
استامی پراید
ایمیداکلوپرید
باقیمانده آفت کش
پریمیکارب
دیازینون
کروماتوگرافی مایع با کارائی بالا
آناهیتا
یزدان پاک
yazdanpaka@yahoo.com
1
گروه حشره شناسی، واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی، شیراز، ایران
AUTHOR
هادی
استوان
ostovan2001@yahoo.com
2
گروه حشره شناسی، واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی، شیراز، ایران
LEAD_AUTHOR
شهرام
حسامی
shahram.hesami@gmail.com
3
گروه حشره شناسی، واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی، شیراز، ایران
AUTHOR
مهدی
غیبی
mehgheibi@yahoo.com
4
گروه حشره شناسی، واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی، شیراز، ایران
AUTHOR
ایمانی، س.؛ طالبی، خ.؛ شجاعی، م. و کمالی، ک.، 1385. اندازه گیری باقی مانده 8 سم آفت کش بر روی گوجه فرنگی و خیار سبز گلخانه ای. هفدهمین کنگره حفاظت از گیاهان ایران، تهران.
1
رادنیا، ح.، 1379. مدیریت تلفیقی آفات و ایمنی مواد شیمیایی "آن سوی بهار خاموش" جلد 1. کرج: سازمان تحقیقات. آموزش و ترویج کشاورزی. معاونت آموزش و تجهیز نیروی انسانی. نشر آموزش کشاورزی.
2
شریفی، آل آقا، ا.، 1378. اهمیت تعیین باقی مانده سموم دفع آفات کشاورزی در محیط زیست و محصولات غذایی. دومین همایش ملی بهداشت محیط، دولتی. وزارت بهداشت، درمان و آموزش پزشکی. دانشگاه علوم پزشکی و خدمات بهداشتی درمانی تهران. جلد 1، صفحات 1 تا 9.
3
طالبی جهرمی، خ.، 1391. سم شناسی آفت کش ها. انتشارات دانشگاه تهران.
4
کاظمی، م.ح.، 1374. کنترل میکروبی آفات و بیماری های گیاهی. دانشگاه تربیت معلم تبریز.
5
Akan, J.C.; Mohammed, Z.; Jafiya, L. and Ogugbuaja, V.O., 2013. Organochlorine Pesticide Residues in Fish Samples from Alau Dam, Borno State, North Eastern Nigeria. J Environ Anal Toxicol. Vol. 3, No. 3, pp: 1.
6
An, E.M. and Shin, H.S., 2011. Analytical methods for the determination of pesticide residues using gaschromatograghy with nitrogen-phosphorus detector. Food Sci Biotechnol. Vol. 20, No. 2, pp: 395-401.
7
AOAC. 2005. Method 985.22 For Nonfatty Foods. Pesticide Analytical Manual (PAM). J. AOAC International. Vol. 1, No. 302, pp: 10.
8
Dikshit, A.K. and Pachauri, D.C., 2000. Persistence and bio-efficacy of β-cyfluthrin and imidacloprid on tomato fruits. Plant Protection Bulletin. Vol. 52, No. 3-4, pp: 1-3.
9
Guil-Guerrero, J.L. and Rebolloso-Fuentes, M.M., 2009. Nutrient composition and antioxidant activity of eight tomato (Lycopersicon esculentum) varieties. Journal of Food Compostition and Analysis. Vol. 22, No. 2, pp: 123-129.
10
Hegazi, M.EA.; Afify, A.M.R.; Hamama, AA. and El-Refahey, T.F.A., 2006. Persistence and behavior of certain insecticide residues on tomatofruits in relation to processing and biochemicalconstituents of fruits. Egyptian Journal ofAgricultural Research. Vol. 84, pp: 853-866.
11
Kim, N.H.; Lee, J.S.; Park, K.A.; Kim, Y.H.; Lee, S.R. and Lee, J.M., 2016. Determination of matrix effects occurred during the analysis of organochlorine pesticides in agricultural products using GC-ECD. Food Science and Biotechnology. Vol. 25, No. 1, pp: 33-40.
12
Kwon, H.; Kim, T.K.; Hong, S.M.; Se, E.K.; Cho, N.J. and Kyung, K.S., 2015. Effect of household processing on pesticide residues in field-sprayed tomatoes. Food Sci Biotechnol. Vol. 24, No. 1, pp: 1-6.
13
Marek, B. and Jolanta, S., 2015. Multiresidue Methods for Determination of CurrentlyUsed Pesticides in Fruits and Vegetables UsingQuEChERS Technique. International Journal of Environmental Science and Development. Vol. 6, No. 1, pp: 1.
14
Scholz, K. and Reinhard, F., 1999. Photolysis of imidacloprid (NTN33893) on the leaf surface of tomato plants. Pesticide Science. Vol. 55, No. 6, pp: 652-654.
15
Slovic, P., 2010. Perceptions of Pesticides as Risks to Human Health. Chapter 63, Krieger, R., In Hayes' Handbook of Pesticide Toxicology (Third Edition). NewYork: Academic Press. pp: 1381-1391.
16
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین اسیدآمینه های آزاد در ژله رویال، گرده زنبورعسل و گرده زنبور هیدرولیز شده
از میان محصولات مختلف گیاهی، محصولات زراعی و باغی مانند دانه های گرده به طور عمده به عنوان مواد دارویی و مکمل های غذایی به علت وجود مواد مغذی ضروری مثل اسیدآمینه، پروتئین، فلاونوئیدها و آلکالوئیدها به طور گسترده ای استفاده می شود. اسیدآمینه های ژله رویال طیف گسترده ای از عملکردهای دارویی و سلامت بخشی را در انسان دارند. مطالعه حاضر با هدف تعیین اسیدآمینه های آزاد ژله رویال، گرده زنبور عسل و گرده زنبور هیدرولیز شده می باشد. نتایج نشان داد که پرولین، لیزین، آسپارتیک اسید، گلوتامیک اسید، سرین و بتاآلانین اسیدآمینه های آزاد عمده در ژله رویال بودند.در این آزمایش مشخص شد که اسیدآمینه های آزاد آسپارتیک اسید، گلوتامیک اسید، آلانین، پرولین، تایروزین، متیونین، لوسین و ایزولوسین در گرده زنبورعسل وجود داشتند. مشخص شد که سه اسیدآمینه آزاد، آسپارتیک اسید، گلوتامیک اسید و پرولین در تمام نمونه های مورد مطالعه وجود داشتند. در این آزمایش گرده زنبورعسل هیدرولیز شده با آنزیم آلکالاز دارای بیش ترین تعداد آمینواسید آزاد (22 اسیدآمینه) بود. علاوه بر اسیدآمینه های آزاد موجود در ژله رویال، گرده و گرده هیدرولیز شده زنبورعسل اسیدآمینه های آزاد دیگری نیز در کروماتوگرام ها وجود داشتند که نمی توان با اسید آمینه های استاندارد شناسایی کرد و به عنوان اسیدآمینه های آزاد ناشناخته درنظر گرفته شدند.
http://www.aejournal.ir/article_103894_160754b54e6f99b4b339fb524e3fe92e.pdf
2019-12-22
297
304
اسیدآمینه آزاد
ژله رویال
گرده
هیدرولیز
حسین
محب الدینی
mohebodini@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
LEAD_AUTHOR
عاطفه
مقصودلو
atefe.maqsoudlou@gmail.com
2
گروه شیمی مواد غذایی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
Bogdanov, S., 2014. Royal Jelly, Bee Brood: Composition, Health, Medicine: A Review. Bee Product Science. Vol.28, No. 3, pp: 118-153.
1
Boselli, E.; Caboni, M.; Sabatini, A.G.; Marcazzan, G.L. and Lercker, G., 2003. Determination and changes of free amino acids in royal jelly during storage. Apidologie. Vol. 34, No. 2, pp: 129-137.
2
Crailsheim, K. and Leonhard, B., 1997. Amino Acids. Vol. 13, 141 p.
3
Crenguţa, L.P.; Liviu, A.l.; Mărghitaş, O.; Daniel, S.; Dezmirean, A.; Şapcaliu, I.R. and Mariana, N., 2011. Biological Activities of Royal Jelly, Review. Animal Science and Biotechnologies. Vol. 44, No. 2, pp: 108-118.
4
De Groot, A.P., 1953. Protein and amino acid requirements of the honey bee (Apis mellifera L.). Physiologia Comparataet Oecologia. Vol. 3, pp: 197-285.
5
Estevinho, L.M.; Rodrigues, S.; Pereira, A.P. and Feás, X., 2012. Portuguese bee pollen: Palynological study nutritional and microbiological evaluation. International Journal of Food Science and Technology. Vol.47, pp: 429-435.
6
Gonzalez-paramas, A.M.; Alfonso, G.B.J.; Cordon, M.C.; Garcia-Villanova, R.J. and Sánchez, J.S., 2006. HPLC fluorimetric method for analysis of amino acids in products of the hive (honey and bee-pollen). Food Chemistry. Vol. 95, pp: 148-156.
7
Guo, H.; Kozuma, Y. and Yonekura, M., 2005. Isolation and properties of antioxidative peptides from water-soluble royal jelly protein hydrolysate. Food Science Technology Research. Vol. 11, pp: 222-230.
8
Ismile, H.; Talukder, G.; Roy, N. and Shaha, R.K., 2012. Analysis of the free amino acid content in pollen of Bangladeshi common fruits flower of known allergenic activity. Agricultural Science Research Journal. Vol. 2, No. 3, pp: 11-16.
9
Jamdar, S.N.; Rajalakshmi, V.; Pednekar, M.D.; Juan, F. and Arun Sharma, V.Y., 2010. Influence of degree of hydrolysis on functional properties, antioxidant activity and ACE inhibitor activity of peanut protein hydrolysate. Food Chemistry. Vol.121, pp: 178-184.
10
Je, J.Y.; Lee, M.H.; Lee, K.H. and Ahn, C.B., 2009. Antioxidant and hypertensive protein hydrolysates produced from tuna liver by enzymatic hydrolysis. Food Research International. Vol. 42, pp: 1266-1272.
11
Khantaphant, S. and Benjakul, S., 2008. Comparative study on the proteases from fish pyloric caeca and the use for production of gelatin hydrolysate with antioxidative activity. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol: 151, pp: 110-115.
12
Kim, V.T.; Glerum. C.; Stoddart, J. and Columbo, S.J., 1987. Effect of fertilization on free amino acid concentration in black spruce and jack pine containerized seedlings. Can. J. For. Res. Vol. 17, pp: 27-30.
13
Lassoued, I.; Mora, L.; Barkia, A.; Aristoy, M.C.; Nasri, M. and Toldra, F., 2015. Bioactive peptides identified in thornback ray skin's gelatin hydrolysates by proteases from Bacillus subtilis and Bacillus amyloliquefaciens. Journal of Proteomics, Vol. 128, pp:8-17.
14
Liming, W.; Jinhui, Z.; Xiaofeng, X.; Yi, L. and Jing, Z.J., 2009. Food Comp. Anal. Vol. 22, 242 p.
15
Matsuoka, T.; Kawashima, T.; Nakamura, T.; Kanamaru, Y. and Yabe, T., 2012. Isolation and characterization of proteases that hydrolyze royal jelly proteins from queen bee larvae of the honeybee, Apis mellifera. Apidologie. Vol: 43, pp: 685-697.
16
Miyamoto, M.; Tsumura, K.; Kimura, M.; Okihara, S.; Sugimoto, H. and Yamada, H., 2004. N-glycans bearing beta-1,3-galactosyl residue in royal jelly glycoproteins. Glycobiology. Vol. 14, No. 11, pp: 241.
17
Morais, M.; Moreira, L.; Feás, X. and Estevinho, L.M., 2011. Honeybee-collected pollen from five portuguese natural parks: Palynological origin phenolic content antioxidant properties and antimicrobial activity. Food and Chemical Toxicology. Vol. 49, pp: 1096-1101.
18
Nicolson, S.W. and Human, H., 2013. Chemical composition of the ‘low quality’ pollen of sunflower (Helianthus annuus L., Asteraceae). Apidologie. Vol. 44, pp: 144-152.
19
Oveisi pour, M.; Abedian, A.M.; Motamedzadegan, A.; Rasco, B.; Safari, R. and Shahiri, H., 2009. The effect of enzymatic hydrolysis time and temperature on the properties of protein hydrolysates from the Persian sturgeon (Acipenser persicus) viscera. Food Chemistry. Vol. 115, pp: 238-242.
20
Pascoal, A.; Rodrigues, S.; Teixeira, A.; Feás, X.L. and Estevinho, M., 2013. Biological activities of commercial bee pollens: antimicrobial, antimutagenic, antioxidant and anti inflammatory. Food and Chemical Toxicology. Vol. 45, pp: 121-130.
21
Pedroche, J.; Yust, M.M.; Lqari, H.; Megias, C.; Giro´ n Calle, J.; Alaiz, M.; Vioque, J. and Millan, F., 2007. Obtaining of Brassica carinataproteinhydrolysates enriched in bioactive peptides using immobilized digestive proteases. Food Research International. Vol. 40, pp: 931-938.
22
Polgár, L., 1987. Structure and function of serine proteases. In: New ComprehensiveBiochemistry, Neuberger, A. and Brocklehurst, K., Ed. Vol. 16, pp: 1-423.
23
Power, O.; Jakeman, P. and FitzGerald, R., 2013. Antioxidative peptides: enzymatic production, in vitro and in vivo antioxidant activity and potential applications of milk-derived antioxidative peptides. Amino Acids. Vol. 44, No. 3, pp: 797-820.
24
Pownall, T.L.; Udenigwe, C.C. and Aluko, R.E., 2010. Amino acid composition and antioxidant properties of pea seed (Pisum sativum L.) enzymatic protein hydrolysate fractions. Journal of agricultural and food chemistry. Vol. 58, No. 8, pp: 4712-4718.
25
Ramadan, M.F. and Al-Ghamdi, A., 2012. Bioactive compounds and health-promoting properties of royal jelly: A review. Journal of Functional Foods. Vol. 4, pp: 39-52.
26
Villanueva, A.; Vioque, J.; Sánchez-Vioque, R.; Clemente, A.; Pedroche, J.; Bautista, J. and Millán, F., 1999. Peptide Characteristics of Sunflower Protein Hydrolysates. Journal of the American Oil Chemists Society. Vol. 76, pp: 1455-1460.
27
ORIGINAL_ARTICLE
تجمع زیستی فلزات سنگین (کادمیوم، سرب و نیکل) در خرچنگ شناگر آبی (Portunus pelagicus)
این تحقیق با هدف تعیین غلظت فلزات کادمیوم، سرب و نیکل در بافت عضله خرچنگ شناگر آبی (Portunus pelagicus) سواحل خلیج فارس، طی دو فصل زمستان و تابستان در شهرهای بندرعباس و بوشهر انجام گرفت. به طورکلی تعداد 130 نمونه خرچنگ شناگر آبی به صورت کاملاً تصادفی نمونه برداری شد. پس از جداسازی بافت عضله نمونه ها، هضم شیمیایی نمونه ها صورت گرفت و تعیین غلظت فلزات با استفاده از دستگاه جذب اتمی انجام گردید. توالی غلظت فلزات مورد مطالعه در بافت عضله خرچنگ شناگر آبی در فصول زمستان و تابستان در شهرها به صورت Pb>Ni>Cd به دست آمد. در فصل زمستان، هر سه فلز و در فصل تابستان کادمیوم و نیکل در بافت عضله خرچنگ شناگر آبیتفاوت معنی داری را در بین شهرهای مورد مطالعه نشان داد. گرچه میزان سرب در بافت عضله خرچنگ شناگر آبی در شهر بوشهر بیش تر از شهر بندرعباس به دست آمد، اما این تفاوت معنی دار نبود. در هر دو شهر، میانگین غلظت فلزات کادمیوم و نیکل در خرچنگ شناگر آبی در فصل تابستان به طور معنی داری نسبت به فصل زمستان بالاتر بود. هم چنین میانگین غلظت سرب در بافت عضله گونه خرچنگ شناگر آبی بندرعباس در فصل تابستان نسبت به زمستان به طور معنی داری بالاتر به دست آمد (0/01=p )، اما در بوشهر این تفاوت معنی دار نبود. میانگین غلظت فلزات مورد مطالعه در بافت عضله خرچنگ شناگر آبی در فصول تابستان و زمستان در مقایسه با استانداردهای WHO، FAO وUS FDA پایین تر بودند.
http://www.aejournal.ir/article_103901_224eed488eb74eb3e5fe4a3e9d750d5d.pdf
2019-12-22
305
312
تجمع زیستی
خرچنگ شناگر آبی (Portunus pelagicus)
فلزات سنگین
خلیج فارس
بندرعباس
بوشهر
نرجس
اکاتی
narjesokati@uoz.ac.ir
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه زابل، زابل، ایران
LEAD_AUTHOR
ملیحه
امینی
amini.malihe@gmail.com
2
گروه علوم و مهندسی محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه جیرفت، جیرفت، ایران
AUTHOR
هانا
اعتمادی
3
گروه محیط زیست، پژوهشکده خلیج فارس، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ایران
AUTHOR
دادور، ا.؛ شاپوری، م. و سینایی، م.، 1392. بررسی آلودگی فلزات سنگین در بافت های ماهیچه و آبشش خرچنگ روح (Ocypode saratan) در سواحل جزر و مدی چابهار. مجله علمی پژوهشی زیست شناسی دریا. دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 5، شماره 19، صفحات 45 تا 56.
1
حسینی، م. و عبدی بسطامی، ا.، 1391. غلظت فلزات سنگین (Pb،Cu،Cd ،Ni) در خرچنگ شناگر آبی (Portunus pelagicus) و رسوبات زیستگاه آن در آب های ساحلی بوشهر. هفدهمین کنفرانس سراسری و پنجمین کنفرانس بین المللی زیست شناسی ایران. دانشگاه شهید باهنر کرمان. صفحات 14 تا 19.
2
دریالعل، خ.؛ داداللهی، س.؛ ذوالقرنین، ح. و صفاهیه، ع،ر.، 1390. بررسی تجمع فلزات سنگین سرب و کروم در خرچنگ شناگر آبی (Portunus pelagicus) در سواحل استان هرمزگان (شهرستان بندرعباس). پنجمین همایش ملی و نمایشگاه تخصصی مهندسی محیط زیست. دانشگاه تهران. صفحات 1 تا 7.
3
رضوی، س،م،ر.؛ وهاب زاده رودسری، ح.؛ زمینی، ع.؛ عسکری ساری، ا. و ولایت زاده، م.، 1391. اندازه گیری و مقایسه میزان فلزات سنگین جیوه، سرب و کادمیوم در عضله و پوسته میگوی سفید هندی (Fenneropenaeus indicus) خلیج فارس (بحرکان)، استان خوزستان. مجله آبزیان و شیلات دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس. سال 3، شماره 9، صفحات 43 تا 52.
4
رفیعی، ا.؛ محمدی، غ.م.؛ عسکری ساری، ا. و ولایت زاده، م.، 1390. بررسی و مقایسه تجمع جیوه، کادمیوم و سرب در عضله میگوی سفید (Metapenaeus affinis) در صیدگاه های بحرکان، لیفه- بوسیف و خور موسی. فصلنامه زیست شناسی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 10، شماره 3، صفحات 49 تا 55.
5
عبیدی، ر.؛ پذیرا, ع.؛ قنبری، ف. و مغدانی، س.، 1395. تعیین میزان غلظت فلزات سنگین نیکل و کادمیوم در بافت های عضله و کبد ماهی سنگسر معمولی (Pomadasys kaakan). مجله علمی شیلات ایران. سال 26 ، شماره 1، صفحات 55 تا 66.
6
عسکری ساری، ا.؛ ولایت زاده، م. و محمدی، م.، 1389. میزان عنصر جیوه در دو گونه ماهی کفشک زبان گاوی و گل خورک در دو منطقه صیادی بندر امام خمینی و بندرعباس. مجله علمی شیلات آزادشهر. سال 4، شماره 2، صفحات 51 تا 56.
7
نجفی اسفاد، م. و دارابی نیا، م.، 1390. بررسی روند آلودگی نفتی با وجود کنوانسیونهای بین المللی مبنی بر جلوگیری و رفع آنها. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. جلد 21، شماره 1، صفحات 94 تا 101.
8
Ayas, D., 2013. Effects of gender and season on potentially toxic metal levels in muscles of adult Blue Swimmer Crabs (Portunus pelagicus) from the northeastern Mediterranean Sea. Journal of Biology and Oceanography. Vol. 2, pp: 2.
9
Clemente, K.J.E.; Tosoc, N.R.N.; Soriano, C.J.M.; Manalo, J.R.; Padirogao, R.T. and Pacis, H.J.M., 2018. Assessment of heavy metal concentration in the blue swimming crab Portunus pelagicus from Manila Bay. Philippines AES Bioflux. Vol, 10, No. 2, pp: 63-67.
10
David, I.G.; Matache, M.L.; Tudorache, A.; Chisamera, G.; Rozylowicz, L. and Radu, G.L., 2012. Food chain biomagnification of heavy metals in samples from the lower Prut floodplain natural park. Environmental Engineering and Management Journal. Vol. 11, No. 1, pp: 69-73.
11
Dural, M.; Goksu, M.Z.L. and Ozak, A.A., 2007. Investigation of heavy metal levels in economically important fish species from the Tuzla lagoon. Food Chemistry. Vol. 102, pp: 415- 421.
12
Eboh, L.; Mepba, H.D. and Ekpo, M.B., 2006. Heavy metal contaminants and processing effects on the composition, storage stability and fatty acid profiles of five common commercially available fish species in Oron Local Government. Nigeria. Journal of Food Chemistry. Vol. 97, No. 3, pp: 490-497.
13
Fabris, G.; Turoczy, N.J. and Stagnitti, F., 2006. Tract metals concentration in edible tissue of snapper, flathead and ablone from coastal waters of Victoria. Australia Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 63, pp: 286-292.
14
Fernandes, C.; Fontaı´nhas-Fernandes, A.; Peixoto, F. and Salgado, M.A., 2007. Bioaccumulation of heavy metals in Liza saliens from the Esmoriz–Paramos coastal lagoon, Portugal. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 66, pp 426-431.
15
Filazi, A.; Baskaya, R. and Kum C., 2003. Metal concentration in tissues of the Black Sea fish Mugil auratus from Sinop-Icliman, Turkey. Journal of Human and Experimental Toxicology. Vol. 22, pp: 85-87.
16
Han, B.C.; Jeng, W.L.; Chen, R.Y.; Fang, G.T.; Hung, T.C. and Tseng, R.J., 1998. Estimation of target hazard quotients and potential health risks for metals by consumption of seafood in Taiwan. Archives Of environmental contamination and toxicology. Vol 35, pp: 711-720.
17
Kamrani, E.; Sabili, A.N. and Yahyavi, M., 2010. Stock Assessment and Reproductive Biology of the Blue Swimming Crab, Portunuspelagicus in Bandar Abbas Coastal Waters, Northern Persian Gulf. Journal of the Persian Gulf, (Marine Science). Vol. 1, No. 2, pp: 11-22.
18
Karadede-Akin, H. and Unlu, E., 2007. Heavy metals concentrations in water, sediments, fish and some benthic organisms from Tigris River, Turkey. Journal of Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 131, pp: 323-337.
19
Koosej, N.; Jafariyan, H.; Rahmani, A.; Patimar, A. and Gholipoor, H., 2017. Measure and Compare Some Heavy Metals in Muscle Tissue of Blue Swimming Crab Portunus pelagicus in Some Areas of the Southern Persian Gulf. Agriculture Research and Technology. Vol. 7, No. 2, pp: 1-6.
20
McMurtrie, S., 2010. Healthy estuary and rivers of the city: water quality and ecosystem health monitoring programme of Ihutai: heavy metals in fih and shellfih from Christchurch Rivers and Estuary: 2010 survey. Report No: R10/148.
21
Mendli, D.; Unal. O.F.; Tuzen, M. and Soylak, M., 2010. Determination of trace metals in different species and sediments from the river Yesilirmak in Tokat, Turkey. Food and Chemical Toxicology. Vol. 48, No. 5, pp: 1383-1392.
22
Hosseini, M.; Abdi Bastami, A. and Kazemzadeh Khoei, J., 2012. Concentrations of heavy metals in selected tissues of blue swimming crab, Portunus pelagicus (Linnaeus, 1758) and sediments from Persian Gulf. World Applied Sciences Journal. Vol. 19, No. 10, pp: 1398-1405.
23
Okati, N. and Esmaili-Sari, A., 2018. Hair mercury and risk assessment for consumption of contaminated seafood in residents from the coast of the Persian Gulf, Iran. Environmental Science and Pollution Research. Vol. 25, No. 1, pp: 639-657.
24
Pourang, N. and Amini, G., 2001. Distribution of trace elements in tissues of two shrimp species from Persian Gulf and effects of storage temperature on elements transportation. Water, Air and Soil Pollution. Vol. 129, pp: 229-243.
25
Raissy, M.; Ansari, M. and Rahimi, E., 2011. Mercury, arsenic, cadmium and lead in lobster (Panulirus homarus) from the Persian Gulf. Toxicology and Industrial Health. Vol. 27, No. 7, pp: 655-659.
26
ROPME. 1999. Regional report of the state of the Marin Environment. State of Kuwait. 220 p.
27
Saei-Dehkordi, S.S.; Fallah, A.A. and Nematollahi, A., 2010. Arsenic and mercury in commercially valuable fish species from the Persian Gulf: Influence of season and habitat. Food and Chemical Toxicology. Vol. 48, pp: 2945-2950.
28
Shulkin, V. M. and Presley, B.J., 2003. Metal concentration in mussel Crenomytillus grayanus and oyster Crassostrea gigas in relation to contamination of ambient sediment. Environmental International. Vol. 29, pp: 493- 502.
29
Szefer, P.B.S.; Kima, C.K.; Kima, E.H. and Leeb, C.B., 2004. Distribution and co associations of trace elements in soft tissues and surrounding seawater and suspended matter of the southern part of the Korean Peninsulla. Environmental Pollution. Vol. 129, pp: 209-228.
30
Turkmen, M.; Turkmen, A.; Tepe, Y.; Ates, A. and Gokkus, K., 2008. Determination of metal contaminations in sea foods from Marmara, Aegean and Mediterranean seas: Twelve fish species. Food Chemistry. Vol. 108, pp: 794-800.
31
Ventura-Lima, J.; Fattorini, D.; Notti, A.; Monserrat, J.M. and Regoli, F., 2009. Bioaccumulation patterns and biological effects of Arsenic in aquatic organisms. In: Environmental Health Risks eds Gosselin, J. D. and Fancher, I. M.; Nova Science Publishers, Inc. pp: 1-18.
32
Wong, C.K.C.; Cheung, R.Y.H. and Wong, M.H., 2000. Heavy metals concentration in green-lipped mussels collected from Tolo Harbour and markets in Hong Kong and Shenzhen. Environmental Pollution. Vol. 109, No. 1, pp: 165-171.
33
ORIGINAL_ARTICLE
پرورش آرتمیا فرانسیسکانا (Artemia franciscana) تحت سیستم مداربسته با استفاده از فناوری بیوفلاک و اثرات آن بر عملکرد رشد و تولیدمثلی آرتمیا و بار باکتریایی آب
این آزمایش در یک سیستم مداربسته انجام شد. بیوفلاک در یک مخزن 7 لیتری تولید شده و توسط پمپ به مقدار مساوی به سه مخزن مجزا پمپ و سه مخزن پرورش به عنوان سه تکرار درنظر گرفته و آزمایش تغذیه ای آرتمیا با 3 تیمار تحت عنوان تیمارهای غذای زیر به مدت 21 روز انجام گرفت. تیمار 1: بیوفلاک ایجاد شده با ملاس+جلبک دونالیلا (%5 نیاز غذایی آرتمیا)، تیمار 2: بیوفلاک ایجاد شده با رافینات+جلبک دونالیلا (%5 نیاز غذایی آرتمیا)، تیمار3: (شاهد): تغذیه با سبوس برنج و مخمر+جلبک دونالیلا. در این آزمایش حجم فلاک، شمارش بار باکتریایی، رشد آرتمیا ، بقا و تولیدمثل آرتمیا در تیمارهای مختلف مورد بررسی قرار گرفت. طبق نتایج، رافینات توانست در طول دوره آزمایشی به طور معنی داری روند تولید بیوفلاک را نسبت به تیمار ملاس افزایش دهد، ملاس به طور معنی داری باعث افزایش تعداد باکتری های هتروتروفیک و افزایش بار قارچی سیستم شد، رشد در تیمارهای تغذیه شده نسبت به شاهد، کاهش معنی دار داشت (0/05>P)، هم آوری نیز در تیمار ملاس نسبت به گروه شاهد کاهش معنی دار داشت. با توجه به نتایج حاصله ملاس و رافینات به عنوان منبع کربن می توانند باعث تولید آرتمیا با کیفیت قابل قیاس با آرتمیای پرورش یافته با غذای تجاری را با هزینه کم تر تولید کنند، البته طبق یافته های تحقیق رافینات به دلیل نسبت کربن به ازت کم نمی تواند پیشنهاد خوبی جهت استفاده به عنوان تنها منبع کربن باشد.
http://www.aejournal.ir/article_103927_bfc27d4776094dd73ab54d7d68b98a56.pdf
2019-12-22
313
320
بایوفلاک
آرتمیا
رافینات
ملاس
بار باکتریایی آب
بهرنگ
دانشخواه
hojat.earthquake@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد
سوداگر
sudagar_m@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
ناصر
آق
n.agh@urmia.ac.ir
3
گروه شیلات، پژوهشکده آرتمیا و آبزیپروری، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
AUTHOR
گیلبرت
ون استپن
gilbert.vanstappen@ugent.be
4
آزمایشگاه مرجع مرکزی آبزی پروری و آرتمیا، دانشگاه گنت، گنت، بلژیک
AUTHOR
اخوت، م.، 1378. شناسایی ارقام برنج ایران، کاشت، داشت و برداشت برنج، نشر علوم کشاورزی. صفحات 120 تا 141.
1
زارعی دارکی، ب.، 1390. جلبک های اکوسیستم های آبی ایران. انتشارات پیام علوی. 323 صفحه.
2
Aguilera-Rivera, D.; Prieto-Davó, A.; Escalante, K.; Chávez, C., Cuzon, G. and Gaxiola, G., 2014. Probiotic effect of FLOC on Vibrios in the pacific white shrimp Litopenaeus vannamei. Aquaculture. Vol. 424, pp: 215-219.
3
Avnimelech, Y., 1999. Carbon and nitrogen ratio as a control element in aquaculture systems. Aquaculture. Vol. 176, pp: 227-235.
4
Avnimelech, Y., 2007. Feeding with microbial flocs by tilapia in minimal discharge bio-flocs technology ponds. Aquaculture. Vol. 264, No. 1-4, pp: 140-147.
5
Avnimelech, Y., 2012. Biofloc Technology-a Practical Guide Book. 2nd ed. The World Aquaculture Society, Baton Rouge, United States. Birmingham, Birmingham magazine. pp: 249-271.
6
Avnimelech, Y. and Ritvo, G., 2003. Shrimp and fish pond soils: processes and management. Aquaculture. Vol. 220, No. 1-4, pp: 549-567.
7
Barnett, J.A., 1975. The entry of D-ribose into some yeasts of the genus Pichia. Microbiology. Vol. 90, No. 1, pp: 1-12.
8
Bender, J.; Lee, R.; Sheppard, M.; Brinkley, K.; Phillips, P.; Yeboah, Y. and Wah, R.C., 2004. A waste effluent treatment system based on microbial mats for black sea bass Centropristis striata recycled water mariculture. Aquacultural engineering. Vol. 31, No. 1-2, pp: 73-82.
9
Boone, E. and Baas-Becking, L.G.M., 1931. Salt effects on eggs and nauplii of Artemia salina L. The Journal of general physiology. Vol. 14, No. 6, pp: 753-763.
10
Boone, E., 1931. experimental intensive culture. Italian Journal of Animal Science. Vol. 14, pp: 332-337. DOI: 10.4081/ijas.2015.3726.
11
Burford, M.A.; Thompson, P.J.; McIntosh, R.P.; Bauman, R.H. and Pearson, D.C., 2003. Nutrient and microbial dynamics in high-intensity, zero-exchange shrimp ponds in Belize. Aquaculture. Vol. 219, pp: 393-411.
12
Crab, R.; Avnimelech, Y.; Defoirdt, T.; Bossier, P. and Verstraete, W., 2007. Nitrogen removal techniques in aquaculture for a sustainable production. Aquaculture. Vol. 270, No. 1-4, pp: 1-14.
13
Chen, S.; Ling, J. and Blancheton, J.P., 2006. Nitrification kinetics of biofilm as affected by water quality factors. Aquacultural engineering. Vol. 34, No. 3, pp: 179-197.
14
Coutteau, P.; Brendonck, L.; Lavens, P. and Sorgeloos, P., 1992. The use of manipulated baker's yeast as an algal substitute for the laboratory culture of Anostraca. Hydrobiologia. Vol. 234, No. 1, pp: 25-32.
15
Ebeling, J.M.; Timmons, M.B. and Bisogni, J.J., 2006. Engineering analysis of the stoichiometry of photoautotrophic, autotrophic, and heterotrophic removal of ammonia–nitrogen in aquaculture systems. Aquaculture. Vol. 257, No. 1-4, pp: 346-358.
16
Ekasari, J.; Crab, R. and Verstraete, W., 2010. Primary nutritional content of bio-flocs cultured with different organic carbon sources and salinity. Hayati Journal of Biosciences. Vol. 17, No. 3, pp: 125-130.
17
González, M.A.; Coleman, A.W.; Gómez, P.I. and Montoya, R., 2001. Phylogenetic relationship among various strains of Dunaliella (Chlorophyceae) based on nuclear ITS rDNA sequences. Journal of Phycology. Vol. 37, No. 4, pp: 604-611.
18
Guevara, M.; Lodeiros, C.; Gómez, O.; Lemus, N.; Núñez, P.; Romero, L., Vásquez, A. and Rosales, N., 2005: Carotenogénesis de cinco cepas del alga Dunaliella sp. (Chlorophyceae) aisladas de lagunas hipersalinas de Venezuela. Revista de Biología Tropical. Vol. 53, No. 5-4, pp: 331-337.
19
Hossain, M.A. and Paul, L., 2007. Low‐cost diet for monoculture of giant freshwater prawn (Macrobrachium rosenbergii de Man) in Bangladesh. Aquaculture Research. Vol. 38, No. 3, pp: 232-238.
20
Irasema, E.L.; Domenico, V.; Juan, M.A.N.; María, R.P.M.; Víctor, H.E. and Emilio, R.B., 2015. Effects of biofloc promotion on water quality, growth, biomass yield and heterotrophic community in Litopenaeus vannamei.
21
Jin, W. and Wankat, P.C., 2007. Hybrid simulated moving bed processes for the purification of p‐xylene. Separation Science and Technology. Vol. 42, No. 4, pp: 669-700.
22
Logan, W.T.; Bartlett, S.L.; Logan, Walter T.; Bartlett, B. and Stephen, L., 1998. Water treatment with large numbers of non-pathogenic bacteria to improve yield of aquatic animals. U.S. Patent. Vol. 5, pp: 155-746.
23
Lulijwa, R.; Van Stappen, G. and Nguyen, V.H., 2013. Effect of carbon/nitrogen ratio ma nipulation in feed supplements on Artemia production and water quality in solar salt ponds in the Mekong Delta, Vietnam. Aquaculture Reserch. pp: 1-7.
24
Mason, D.T., 1963. The growth response of Artemia salina (L.) to various feeding regimes. Journal of Crustaceana. Vol. 5, pp: 138-150.
25
Moffitt, C.M. and Cajas-Cano, L., 2014. Blue growth: the 2014 FAO state of world fisheries and aquaculture. Fisheries. Vol. 39, No. 11, pp: 552-553.
26
Naegel, L.C., 1999. Controlled production of Artemia biomass using an inert commercial diet, compared with the microalgae Chaetoceros. Aquacultural engineering. Vol. 21, No. 1, pp: 49-59.
27
Naylor, R.L.; Naylor, R.J.; Primavera, J.H.; Kautsky, N.; Beveridge, M.C.; Clay, J.; Folke, C.; Lubchenco, J.; Mooney, H. and Troell, M., 2000. Effect of aquaculture on world fish supplies. Nature. Vol. 405, No. 6790, 1017 p.
28
Phadwal, K. and Singh, P.K., 2003. Isolation and characterization of an indigenous isolate of Dunaliella sp. for β‐carotene and glycerol production from a hypersaline lake in India. Journal of Basic Microbiology: An International Journal on Biochemistry, Physiology, Genetics, Morphology, and Ecology of Microorganisms. Vol. 43, No. 5, pp: 423-429.
29
Piedrahita, R.H., 2003. Reducing the potential environmental impact of tank aquaculture effluents through intensification and recirculation. Aquaculture. Vol. 226, No. 1-4, pp: 35-44.
30
Raja, R.; Hemaiswarya, S. and Rengasamy, R., 2007. Exploitation of Dunaliella for β-carotene production. Applied Microbiology and Biotechnology. Vol. 74, No. 3, pp: 517-523.
31
Schneider, O., 2005. Analysis of nutrient flows in integrated intensive aquaculture systems. Aquacultural Engineering, Oxford. Vol. 32, No. 3-4, pp: 379-401.
32
Sorgeloos, P.; Lavens, P.; Leger, P.; Tackaert, W. and Versichele, D., 1986. Manual for the culture and use of brine shrimp Artemia in aquaculture.
33
Soder, K.J.; Hoffman, K. and Brito, A.F., 2010. Effect of molasses, corn meal, or a combination of molasses plus corn meal on ruminal fermentation of orchardgrass pasture during continuous culture fermentation. The Professional Animal Scientist. Vol. 26, No. 2, pp: 167-174.
34
Sui, L.Y.; Wang, J.; Nguyen, V.H.; Sorgeloos, P.; Bossier, P. and Van Stappen, G., 2013. Increased carbon and nitrogen supplementation in Artemia culture ponds results in higher cyst yields. Aquaculture international. Vol. 21, No. 6, pp: 1343-1354.
35
Tacon, A.G.J., 1987. The nutrition and feeding of farmed fish and shrimp. A training manual 1 - The essential nutrients. FAO, Rome.
36
Torres-Beristain, B.; Verdegem, M.; Kerepeczki, E. and Verreth, J., 2006. Decomposition of high protein aquaculture feed under variable oxic conditions. Water research. Vol. 40, No. 7, pp: 1341-1350.
37
Trenkenshu, R.P.; Gevorgiz, R.G. and Borovkov, A.B., 2005. The experience of industrial cultivation Dunaliella salina. Sevastopol. pp: 90-97.
38
Van Stappen, G., 1996. Use of cysts. In Manual on the production and use of live food for aquaculture. Vol. 361, pp: 107-136.
39
Vayalil, P., 2012. Critical reviews in food science and nutrition, date fruits (Phoenix dactylifera Linn): An emerging medicinal food. Department of Pathology, University of Alabama.
40
ORIGINAL_ARTICLE
غلظت فلزات سنگین سرب، مس، کادمیوم و جیوه در بافت خوراکی اویستر صخرهای (Saccostrea cucullata) و میگوی سفید هندی (Penaeus indicus) در مناطق نوزادگاهی سواحل شمالی دریای عمان
مطالعه حاضر با هدف بررسی و مقایسه میزان تجمع فلزات سنگین سرب، مس، کادمیوم و جیوه در بافت عضله اویستر صخرهای و میگوی سفید هندی در مناطق نوزادگاهی سواحل شمالی دریای عمان در دو بازه زمانی قبل و بعد از بروز مانسون به ترتیب در بهار و پاییز سال 1396 انجام شد. 50 نمونه از 5 ایستگاه های بندر جاسک، صیدگاه درک، بندرپزم، خلیج چابهار و بندر گواتر تهیه شد. استخراج فلزات با استفاده از روش هضم مرطوب و تعیین غلظت آنها با دستگاه جذب اتمى انجام شد. نتایج به دست آمده اختلاف معنی داری در میزان تجمع فلزات سنگین در بافت عضله هر دو گونه بین ایستگاههای مختلف نشان داد (0/05>p). هم چنین مقایسه میزان تجمع فلزات سنگین قبل و بعد از مانسون نیز اختلاف معنی داری در میزان تجمع فلز کادمیوم در بافت اویستر صخرهای و میزان تجمع فلز مس در بافت میگوی سفید هندی نشان داد (0/05>p). مقایسه نتایج به دست آمده با آستانه استانداردهای جهانی نشان داد که غلظت سرب در بافت عضله اویستر صخره ای در مقایسه با آستانه استاندارد جهانى WHO بالاتر بود. مقدار مس نیز در بافت عضله اویستر صخره ای و میگوی سفید هندی در مقایسه با آستانه استانداردهاى جهانى WHO و NHMRC بالاتر بود. غلظت کادمیوم از حدود آستانه استاندارد جهانى NHMRC و سازمان استاندارد ملی ایران و غلظت جیوه از حدود آستانه استاندارد جهانی WHO بالاتر بود. در مجموع نتایج این تحقیق نیاز به رویکرد اکوسیستمی در جهت مدیریت پایدار مناطق نوزادگاهی سواحل شمالی دریای عمان را نشان می دهد. این امر آلودگی آبزیان را محدود می کند که یک تهدید کننده سلامت برای افرادی است که از منابع آبزی آلوده به فلزات سنگین را مصرف می کنند.
http://www.aejournal.ir/article_103936_300d457d31ff0e0ef3b6586eb50fdd3d.pdf
2019-12-22
321
330
اویستر صخرهای
میگوی سفید هندی
عضله
فلزات سنگین
دریای عمان
علی
مهدی آبکنار
aliabkenar@gmail.com
1
گروه شیلات، واحد چابهار، دانشگاه آزاد اسلامی، چابهار، ایران
LEAD_AUTHOR
مازیار
یحیوی
maziar_yahyavi@yahoo.com
2
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
امیر هوشنگ
بحری
amirbahri52@yahoo.com
3
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
محمدرضا
بیواره
mohamadrezabivareh@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
پورباقر، ه.؛ حسینی، س. و.؛ خراسانی، ن.؛ حسینی، س. و دلفیه، پ.، 1392. مقدار فلزات سنگین در عضله میگوی سفید هندی (Fennerpenaeus indicus). نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 67، شماره 1، صفحات 13 تا 24.
1
خشنود، ر.، 1385. بررسی تجمع فلزات سنگین (جیوه، سرب، کادمیوم، وانادیوم و نیکل) در دو گونه از کفشک ماهیان بندرعباس و بندرلنگه. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات اهواز. 127 صفحه.
2
رضوی، س.م.ر.؛وهاب زاده،ح.،؛ زمینی،ع.ع.؛عسکریساری،ا. و ولایت زاده، م.؛ 1391. اندازه گیری و مقایسه میزان فلزات سنگین جیوه، سرب و کادمیوم در عضله و پوسته میگوی سفید هندی در خلیج فارس (بحرکان استان خوزستان). مجله آبزیان و شیلات. دوره 3، شماره 9. صفحات 49 تا 53.
3
سقلی، م.؛ یادگاریان، ل.؛ حسینی، س.ع. و مخدومی، ن.م.؛ 1388. بررسی غلظت برخی از فلزات سنگین (Zn، Pb، Hg و Cd) در بافت عضله میگوی سفید هندی (Penaeus indicus) پرورشی منطقه گمیشان (استان گلستان)، منطقه کلاهی (استان هرمزگان) و میگوی دریای خزر (Penaeus elegans). مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال. دوره 4، شماره 1، صفحات 87 تا 95.
4
شیرالی، ب. و قطب الدین، ن.، 1394. غلظت فلزات سنگین (Ni, Cd, Zn) در آبشش، عضله و هپاتوپانکراس میگوی وانامی (Litopenaeus vannamei) در سایت پرورش میگوی چوئیده آبادان. مجله زیست شناسی دریا. دوره 7، شماره 25، صفحات 65 تا 72.
5
عظیمی، ع.؛ صفاهیه، ع.ر. و دادالهی سهراب، ع.، 1392. مقایسه تجمع زیستی جیوه و کادمیوم در بافت نرم صدف دوکفه ای Crassostrea sp. طی در معرض گذاری آزمایشگاهی. مجله اقیانوس شناسی. سال 4، شماره 15، صفحات 39 تا 47.
6
عین الهی پیر، ف.؛ صفاهیه، ع.ر.؛ دادالهی سهراب،ع. و سواری، ا.، 1389. تجمع فلزات سنگین (مس، سرب و نیکل) در رسوب و دوکفه ای Saccostrea cucullata در ناحیه بین جزر و مدی چابهار. مجله علوم و فنون دریایی. دوره 10، شماره 2، صفحات 10 تا 25.
7
فقیری،ا.؛ صفاهیه، ع.ر.؛ جوهری رنگ،م.؛ عیدی وند، س.؛ نیک پور، ی.ا.؛ سواری، ا. و عبداللهی مامودان، س.، 1389. بررسی میزان فلزات سنگین (جیوه، مس، سرب) در بافت نرم صدف دوکفه ای Crassostrea gigasدر بندر امام خمینی. دوازدهمین همایش صنایع دریایی. ایران، زیباکنار، 27 الی 29 مهر ماه.
8
کتال محسنی، م.، 1381. بررسی آلودگی های محیط زیست دریایی ناشی از فعالیت های صنعتی و معدنی غرب بندرعباس. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه علوم و فنون دریایی، دانشگاه آزاد اسلامی، ایران.
9
کوسج، ن.؛ جعفریان، ج. ا.؛رحمانی،ع.ا.؛ پاتیمار،ع. ا. و قلی پور،ح.، 1395. مطالعه و اندازه گیری برخی عناصر فلز (سرب، نیکل، روی، مس و آهن) در بافت عضله میگوی سر تیز (Metapenaeus affinis) در استان هرمزگان. مجله علمی شیلات ایران. دوره 26، شماره 1، صفحات 179 تا 189.
10
موحد، ع.؛ دهقان،ع. و.؛ حاجی حسینی،ر.؛ اکبرزاده، ص.؛ زنده بودی،ع.ع.؛نفیسی بهابادی،م.؛محمدی،م.م.؛ حاجیان،ن.؛ پاکدل،ف.؛ حفظ الله،ع. و ایران پور، د.، 1392. بررسی غلظت فلزات سنگین در بافت خوراکی میگوهای نمونه برداری شده از آبهای سواحل استان بوشهر. فصلنامه طب جنوب. دوره16، شماره 2، صفحات 100 تا 109.
11
موحدی، ح.؛ فتح الهی، م.؛ پیرعلی، ا.؛ زمانی، ا. و محمودی، ر.،1395. دوکفه ای (Corbicula fluminalis (Müller, 1774 : شاخص زیستی نشان دهنده فلزات سنگین در زیستگاه های رودخانه زاینده رود. مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 6، شماره 3، صفحات 33 تا 44.
12
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 1394. ارزیابی ذخایر و ارائه راهکارهای مدیریتی در راستای بهره برداری پایدار از ذخایر آبزیان. 94-26 ک، 73 صفحه.
13
ولایت زاده، م. و عسگری ساری، ا.، 1393. بررسی و مقایسه تجمع آرسنیک، سرب و روی در عضله میگوی وانامی (Litopenaeus Vannami) و میگوی سفید هندی (Fenneropenaeus indicus) پرورشی ایران. فصلنامه زیست شناسی جانوری. دوره 6، شماره 4، صفحات 91 تا 98.
14
APHA. 2005. American Public Health Association, Standard Methods for the Examination of Water and Waste Water. American Public Health Association.
15
Bello, G. and Piptone, C., 2002. Predation on Cephalopods by the Giant Red Shrimp Arisaempha Foliacea, Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. Vol. 82, pp: 213-218.
16
Blasco, J.: Arias, A.M. and Saenz, V., 2002. Heavy metal concentrations in Squilla mantis (L.) (Crustacea, Stomatopoda) from the Gulf of Cadiz Evaluation of the impact of the Aznalcollar mining spill. Environment International. Vol. 28, pp: 111-116.
17
Bryan, G.W., 1971. The effects of heavy metals (other than mercury) on marine and estuarine organisms. Proceedings of the Royal Society of London. B, No, 177389, 410 p.
18
Bryan, G.W., 1974. Adaptation of an estuarine Polychaete to sediments containing high concentrations of heavy metals. In: Pollution and physiology of marine organisms. Vernberg, F.J. and Vernberg, W.B., (eds.). Academic Press London. pp: 123-135.
19
Clark, R.B., 1992. Marin Pollution. 3rd edition. Clarendon press. Oxford. University of Newcastel upon Tyne. pp: 77-80.
20
Clerck, R de.; Vyncke, W.; Guns, M. and Hoeyweghen, P.V., 1995. Concentrations of mercury, cadmium, copper, zinc and lead in sole from Belgian catches (1973-1991). Mededelingen Faculteit Lanbouwkundige en Toegepaste Biologische Wetenschappen. Universiteit Gent (Belgium). Vol. 60, pp: 1-6.
21
Cogun, H.Y.; Yuzereroglu, T.A.; Firat, O.; Gok, G. and Kargin, F., 2006. Metal concentrations in fish species from the Northeast Mediterranean Sea. Journal of Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 121, pp: 431-438.
22
Coteur, G.; Gosselin, P.; Wantier, P.; Chambost-Manciet, Y.; Danis, B.; Pernet, Ph.; Warnau, M. and Dubois, P., 2003. Echinoderms as bioindicators, bioassays, and impact assessment tools of sediment associated metals and PCBs in the North Sea. Arch. Environ. Contam. Toxicol. Vol. 45, pp: 190-202.
23
Darmono, D. and Denton, G.R.W., 1990. Heavy metals concentration in the banana prawn Penaeus merguiensis and leader prawn P. monodon in the Townsvile region of Australia. Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 44, pp: 479-486.
24
de Mora, S.; Fowler, S.W.; Wyse, E. and Azemard, S., 2004. Distribution of heavy metals in marine bivalves, fish and coastal sediments in the Gulf and Gulf of Oman, Marine Pollution Bulletin. Vol. 49, pp: 410-424.
25
Delman, O.; Demirak, A. and Balci, A. 2006. Determination of heavy metals (Cd, Pb) and trace elements (Cu, Zn) in sediments and fish of the southeastern Aegean Sea (Turkey) by atomic absorption spectrometry. Food Chemistry. Vol. 26, pp: 157-162.
26
Demirak, A.; Yilmaz, F.; Tuna, A.L. and Ozdemir, N., 2006. Heavy metals in water, sediment and tissue of Leuciscus cephalus from a stream in southwestern Turkey. Chemosphere. Vol. 63, pp: 1451-1458.
27
Doyle, C.J.; Pablo, F.; Lim, R.P. and Hyne, R.V., 2003. Assesment of metal toxicity in sediment pore water from Lake Macquarie, Australia). Journal of Environmental Contamination Toxicology. Vol. 44, pp: 343-350.
28
Eisler, R., 1985. Cadmium hazards to fish, wildlife and invertebrates. A synoptic review. US Fish and Wildlife Service Report 85, Washington, DC, USA. Vol. 85, pp: 39-46.
29
FDA. 2011. Fish and Fishery Products Hazards and Controls Guidance, 14th edition. Department of health and human service public health food and drug administration center for food safety and applied nutrition of food safety. 476 p.
30
Fernanda, J.V.; Flavia, E.A.; Alicia, F.C. and Alejandra, V., 2003. Identification of fish stocks of river Crocker (Plagioscion ternetzi) in Paraná and Paraguay rivers by Otolith morphometry. Estenban Avigliano University of Buenos Aires.
31
Fowler, S.W.; Readman, J.W.; Oregioni, B.; Villeneuve, J.P. and Mckay, K., 1993. Petroleum hydrocarbons and trace metals in nearshore Gulf sediments and biota befor and after the 1991 war: an assessment of temporal and spatial trends. Marine Pollution Bulletin. Vol. 27, pp: 171-182.
32
Geffard, A.; Quéau, H.; Dedourge, O.; Biagianti-Risboug, S. and Geffard, O., 2007. Influence of biotic and abiotic factors on metallothionein level in Gammarus pulex. Comparative Biochemistry and Physiology, Part C. Vol. 145, No, 4, pp: 632-640.
33
Giffords, S.; Dunstan, R.H.; Connor, W.O.; Roberts, T. and Tioa, R., 2004. Pearl Aquaculture. Profitable. Environmental. The Science of the Total Environmental. Vol. 319, pp: 27-37.
34
Golovanova, I.L., 2008. Effect of heavy metals on the physiological and biochemical status of fishes and aquatic invertebrates. Inland Water Biology. Vol. 1, pp: 93-101.
35
Gulec, A.K.; Yildrim, N.C.; Danabas. D. and Yildirim, N., 2011. Some haematological and biochemical parameters in common carp Cypinus carpio L 1758 in Munzur River, Tunceli, Turkey. Asian Journal of Chemistry. Vol. 23, No. 2, pp: 910-912.
36
Hamed, M.A. and Emara, A.M., 2006. Marine molluscs as biomonitors for heavy metal levels in the Gulf of Suez, Red Sea. Journal of Marine Systems. Vol. 60, pp: 220-234.
37
Han, B.C. and Hung, T.C., 1990. Green oysters caused by copper pollution on the Taiwan coast. Environmental Pollution. Vol. 65, pp: 347-362.
38
Langston, W.J. and Spence, S.K., 1994. Metal Analysis. In Calow P (ed) Handbook of Ecotoxicology, Blackwell Scientific, Oxford, UK. pp: 45-78.
39
Le, Q.D.; Shirai, K.; Nguyen, D.C.; Miyazaki, N. and Arai, T., 2009. Heavy metals in a tropical eel Anguilla marmorata from The Central Part of Vietnam. Water, Air, & Soil Pollution. Vol. 204, pp: 69-78.
40
MOOPAM. 1999. Manual of oceanographic observations and pollutant analysis methods. 3rd ed, Kuwait. 321 P.
41
Movahed, A.; Dehghan, A.; Haji Hosseini,R.; Akbarzadeh, S.; Zendehboudi, A.A.;NafisiBehabadi, M.; Mohammadi, M.M.; Hajian, N.; Pakdel, F.; Hefzulla, A.and Iranpour, D., 2013. Evaluation of heavy metals in the tissues of different species of shrimps collected from coastal waters of Bushehr, Persian Gulf. Iranian South Medical Journal. Vol. 16, No. 2, pp: 100-109.
42
Norum, U.; Lai, V.W. and Cullen, W.R., 2005. Trace element distribution during the reproductive cycle of female and male spint and pacific scallops, with implication for biomonitoring. Marine Pollution. Vol. 50, pp: 148-175.
43
Packer, D.; Ireland, M. and Wootton, R. 1980. Cadmium, copper, lead, zinc and manganese in the polychaete Arenicola marina from sediments around the coast of Wales. Environmental Pollution Series A, Ecological and Biological. Vol. 22, No. 4, pp: 309-321.
44
Reynolds, R.M., 1993. Physical oceanography of the Gulf, Strait of Hormuz and the Gulf of Oman- Results from the Mt. Mitchell Expedition. Marine Pollution Bulletin. Vol. 27, pp: 35-59.
45
Roper, D.S. and Primor, R.D., 1991. Pollution related differences in the codition cycle oyster Crassostrea gigas from Manukua Harbur, New Zealand. Marine Environmental Research. Vol. 31, pp: 179-214.
46
Sadige, M., 1992. Toxic metal chemistry in marine environments. Marcel Dekker, Inc. Suzanne, K. and Marcy, M., 2001. Trends and Effects of Heavy metals in the Arctic Monitoring and assessment Program. U.S. Envirnmental Protection Agancy.
47
Swartz, R.C. and Lee, H., 1980. Biological processes affecting the distribution of pollutants in marine sediments. Part I accumulation, trophic transfer, biodegration and migration. In: Contaminants and sediments: analysis, chemistry biology. Baker, R.A., (ed.). Ann Arbor Science Publ., Inc. Vol. 2, pp: 553-533.
48
Ugolini, A.; Borghini, F.; Calosi, P.; Bazzicalupo, M.; Chelazzi, G. and Focardi, S., 2004. Mediterranean Talitrus saltator (Crustacea, Amphipoda) as a biomonitor of heavy metals contamination. Marine Pollution Bulletin. Vol. 48, pp: 526-532.
49
Unlu, S.; Topcuoglu, S.; Alpar, B.; Kirbasoglu, C. and Yilmaz, Y.Z., 2008. Heavy metalpollution in surface sedimentns and mussel samples in the Gulf of Gemlike. Journal of Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 144, pp: 169-178.
50
Van Duren, L.A.; Herman, P.M.J.; Sandee, A.J.J. and Heip, C.H.R., 2006. Effects of muscle filtering activity on boundary layer structure. Journal of Sea Researches. Vol. 55, pp: 3-14.
51
WHO. 1995. Health risks from marine pollution in the Mediterranean. Part 1 Implications for Policy Markers. 25 p.
52
Wu, J.P. and Chen, H.Ch., 2005. Metallothionein induction and heavy metals accumulation in white shrimp Litopenaeus vannamei exposed to cadmium and zinc. Comparative Biochemistry and Physiology. Part C. Vol. 140, pp: 383-394.
53
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی قابلیت جذب زیستی آلودگی نانوذرات نقره توسط دوکفه ای Dressina polymorpha در دوره بلندمدت
در این مطالعه میزان جذب مستقم آلودگی نانوذرات نقره توسط دوکفه ای D. polymorpha در دوره بلندمدت 8 و 16 روز بررسی گردید. تعداد مورد نیاز دوکفه ای D. polymorpha با دامنه طولی 0/8±2/53 سانتی متر از محیط طبیعی استحصال گردید. نانوذرات با استفاده از دستگاه التراسونیک با 400 دور دقیقه در استوک آب مقطر پخش شد. جهت یک فاز شدن آب مخازن با محلول نانوذره از دستگاه هموژنایزر با 14000 دور در دقیقه استفاده شد و تیمارها با غلظت های 2/5، 25 و 50 ppm تهیه گردید. انباشت نانوذرات در توده بافتی دوکفه ای با دستگاه ICP ساده و نحوه توزیع نانوذرات در مخازن دوکفه ای با تست DLS سنجیده شد. نتایج مربوط به ICP نشان داد بیش ترین میزان انباشت نانوذرات در توده بافتی دوکفه ای ها در بالاترین غلظت مواجهه (0/05>P) می باشد و کم ترین میزان جذب در پایین ترین غلظت مواجهه به صورت معنی داری (0/05>P) نسبت به سایر تیمارها مشاهده شد. هم چنین نتایج تست DLS نشان داد که ذرات از لحاظ اندازه بین 100-10 نانومتر بوده اند که موید عدم ترسیب و هموژن بودن نانوذرات در مخازن حاوی دوکفه ای ها بوده است. با توجه به نتایج به دست آمده دوکفه ای D. polymorpha به عنوان شاخصی بسیار مناسب جهت پایش اثرات نانو ذرات نقره در محیط های آبی پیشنهاد می گردد.
http://www.aejournal.ir/article_103945_a0940f8b56befd8b09b67c32bcb446aa.pdf
2019-12-22
331
336
Dreissena polymorpha
جذب زیستی
نانوذرات نقره
بهزاد
طعنه
t.behzad69@gmail.com
1
گروه زیستشناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
مرتضی
یوسف زاده
m.yousozadeh@yahoo.com
2
گروه زیستشناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
سیدعلی اکبر
هدایتی
a.hedayati@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
نرگس
امرالهی
narges.am@yahoo.com
4
گروه زیستشناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
آذرﺑﺎد، ح.، 1389. ﻣﻄﺎﻟﻌﻪ ﺻﺤﺮاﻳﻲ ﺟﺬب ﻓﻠﺰات ﺳﻨﮕﻴﻦ ﺗﻮﺳﻂ ﺻﺪف Saccostrea cucullata (ﻣﻄﺎﻟﻌﻪ ﻣﻮردی: ﺟﻨﮕﻞ ﻫﺎی ﻣﺎﻧﮕﺮو ﻻﻓﺖ). ﭘﺎﻳﺎن ﻧﺎﻣﻪ ﻛﺎرﺷﻨﺎﺳﻲ ارﺷﺪ رﺷﺘﻪ ﺷﻴﻼت. داﻧﺸﮕﺎه ﺗﻬﺮان.
1
ﺑﺎﺑﺎﻳﻲ سیاهگل، ه.، 1383. ﺑﺮرﺳﻲ ﺟﺬب ﻓﻠﺰات ﺳﻨﮕﻴﻦ در ﺻﺪف آﻧﻮدوﻧﺖ (Anodonta cygnea) در ﺗﺎﻻب ﺑﻴﻦ اﻟﻤﻠﻠﻲ اﻧﺰﻟﻲ. ﭘﺎﻳﺎن ﻧﺎﻣﻪ ﻛﺎرﺷﻨﺎﺳﻲ ارﺷﺪ رﺷﺘﻪ ﺷﻴﻤﻲ درﻳﺎ. داﻧﺸﮕﺎه آزاداﺳﻼﻣﻲ، واﺣﺪ ﺗﻬﺮان ﺷﻤﺎل.
2
Abel, P.D., 1976. Effects of some pollutants on the filtration rate of Mytilus. Marine pollution bulletine. Vol. 7, pp: 228-231.
3
Andujar, P.; Simon-Deckers, A.; Galateau-Sallé, F.; Fayard, B.; Beaune, G.; Clin, B. and Lanone, S., 2014. Role of metal oxide nanoparticles in histopathological changes observed in the lung of welders. Particle and Fiber Toxicology. Vol. 11, No. 1, pp: 1-13.
4
Barnett, B.P.; Arepally, A.; Karmarkar, P.V.; Qian, D.; Gilson, W. D.; Walczak, P. and Bulte, M., 2007. Magnetic resonance guided, real time targeted delivery and imaging of magnetocapsules immunoprotecting pancreatic islet cells. Nature medicine. Vol. 13, No. 8, pp: 986-991.
5
Cashike, J.A. and Ward, J.V., 1995. Nitrate (NO3–N) toxicity to aquatic life: a proposal of safe concentrations for two species of Nearctic freshwater invertebrates. Chemosphere. Vol. 31, pp: 3211-3216.
6
Fukunaga, A. and Anderson, M.J., 2011. Bioaccumulation of copper, lead, zinc by the bivalve Macomona liliana and Austrovenus stutchburyi. Journal of experimental marine biology and ecology. Vol. 396, pp: 244-252.
7
Gerhard, A., 1993. Review of impact of heavy metals on stream invertebrates with special emphasis on acid conditions. Water, air, and soil pollution. Vol. 66, No. 3, pp: 289-314.
8
Golovanova, I.L. and Frolova, T.V., 2005. Influence of copper, zinc and cadmium upon carbohydrase activities in aquatic invertebrates. Biologica Vnutrennih Vod. Vol. 4, pp: 73-83.
9
Hakanson, L., 1984. Metals in fish and sediment from the river kolbacksan water system, Sweden. Archive for hydrobiology. Vol. 101, pp: 373-400.
10
Kachynski, A.V.; Kuzmin, A.N.; Nyk, M.; Roy, I. and Prasad,P.N., 2008. Zinc oxide nanocrystals for nonresonant nonlinear optical microscopy in biology and medicine. The Journal of Physical Chemistry. Vol. 112, No. 29, pp: 10721-10724.
11
Luoma, S.N.; Tyler, C.R.; Fabrega, L.; Galloway, T.S. and Lead, J.R., 2011. Silver nanoparticles. Behavior and effects in the aquatic environment. Environment international. Vol. 37, No. 2, pp: 517-531.
12
Martins, J.; Oliva, T.L. and Vasconcelos, V., 2007. Assays with Daphnia magna and Danio rerio as alert systems in aquatic toxicology. Environ Int. Vol. 33, No. 3, pp: 414-425.
13
Moezzi, F.; Javanshir, A.; Eagderi, S.; Pourbagher, H. and Sallaki, M., 2013. Evaluation of bivalve clearance (CR) as a physiological indicator of heavy metal toxicity in freshwater mussel, Anodonta cygnea (Linea, 1876). Scientific journal of animal sciences. Vol. 2, No. 4, pp: 89-94.
14
Moore, M.N., 2006. Do nanoparticles present ecotoxicological risks for the health of the aquatic environment. Environment International. Vol. 32, No. 8, pp: 967-976.
15
Shi, D. and Wang, W.X., 2004. Modification of trace metal accumulation in the green mussel Perna viridis by exposure to Ag, Cu and Zn. Environmental pollution. Vol. 132, pp: 265-277.
16
Viarengo, A.; Zinicchi, G.; Moore, M.N. and Orunesu, M., 1981. Accumulation and detoxification of copper by the mussel Mytilus galloprovincialis Lam: a study of the subcellular distribution in the digestive gland cells. Aquatic toxicology. Vol. 1, pp: 147-157.
17
Wei, H. and Wang, E., 2008. Fe3O4 magnetic nanoparticles as peroxidase mimetics and their applications in H2O2 and glucose detection. Analytical chemistry. Vol. 80, No. 6, pp: 2250-2254.
18
ORIGINAL_ARTICLE
توزیع و فراوانی میکروپلاستیک ها در دوکفه ای Pinctada radiata و رسوبات بندرلنگه در سواحل غربی خلیج فارس
میکروپلاستیک ها تکه های کوچکی از زباله های پلاستیکی (کم تر از 5 میلی متر)، هستند که در سواحل، سطح دریا و بستردریا وجود دارد. مطالعه حاضر فراوانی، توزیع و انواع میکروپلاستیک ها را در توده احشایی دوکفه ای Pinctada radiata و رسوبات نمونه برداری شده در سواحل بندرلنگه مورد بررسی قرار داده است. جداسازی میکروپلاستیکها به روش اختلاف چگالی و روش هضم برای دوکفه ای انجام گرفت. اسپکتروفتومتری، FT-IR و SEM-ED جهت شناسایی جنس پلیمر به کار گرفته شد. میکروپلاستیک های یافت شده دارای رنگ های متنوعی از جمله سیاه، سفید، شفاف، قرمز، صورتی و سبز بودند. با استفاده از اطلاعات به دست آمده، در ایستگاه های بندرلنگه، میانگین تعداد کل میکروپلاستیک های استخراج شده از توده احشایی P. radiata برحسب گرم 0/03±0/15 تعداد/گرم و بر حسب فرد 1/13±3/94 تعداد/فرد، تعداد میکروپلاستیک ها در رسوبات بندرلنگه 0/71±34/5 در کیلوگرم رسوب اندازه گیری شد. شایع ترین پلیمرهای یافت شده، پلیاتیلن (PE)، پلیاتیلن ترفتالات (PET) و نایلون بودند. فراوان ترین نوع میکروپلاستیک های جدا شده از دوکفه ای P. radiata میکروفیبرها و قطعات بودند. فراوان ترین اشکال میکروپلاستیک استخراج شده در رسوبات فیبر و فیلم بودند. مطالعه حاضر میتواند اطلاعات مفیدی را برای تحقیقات بیش تر و هم چنین پیش زمینه ای جهت کنترل و پایش این آلاینده در محیط دریایی خلیج فارس فراهم نماید.
http://www.aejournal.ir/article_103969_af116c9a19b47359d67c67cb62e77ccd.pdf
2019-12-22
337
344
میکروپلاستیک
زباله های دریایی
خلیج فارس
بوم سامانه دریایی
مرضیه
نوری
marziehnuri@gmail.com
1
گروه شیلات و محیط زیست، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
پریسا
امیری
parisaamiri76@yahoo.com
2
اداره کل حفاظت محیط زیست استان ایلام، ایلام، ایران
AUTHOR
ابوالفضل
ناجی
abolfazlnaji@gmail.com
3
گروه شیلات و محیط زیست، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
Aathi, K.; Ramasubramanian, V.; Uthayakumar, V. and Munirasu, S., 2013. Effect of supplemented diet on survival, growth, hematological, biochemical and immunological responses of Indian major carp labeo rohita. InternationalResearchJournalofPharmacy. Vol. 4. No. 5, pp: 141-147.
1
Ahmadi, S.; Farhangi, M.; Rafii, G.R. and Ghaednia, B., 2008. Effect of different levels of astaxsnthin on growth parameters and survival in Litopenaeus vannamei. Journal of Marine Sciences and Technology. Vol. 1-2, pp: 1-12.
2
Beutner, S.; Bloedorn, B.; Frixel, S.; Blanco, I.H.; Hoffman, T. and Martin, H., 2001. Quantitative assessment of antioxidant properties of natural colorants and phytochemicals: carotenoids, flavonoids, phenols and indigoids. The role of β-carotene in antioxidant functions. Journal of the Science of Food Agriculture. Vol, 81, pp: 559-568.
3
Burtis, C.A.; Ashwood, E.R. and Brund, D.E., 1994. Tietz Textbook of Clinical Chemistry (5thed.). W.B. Sunders Company. Philadelphia. USA. 560 p.
4
Chein, Y.H. and Jeng, S.C., 1992. Pigmentation of kuruma prawn, Penaeus japonicus bate, by various pigment sources and levels and feeding regimes. Aquaculture. Vol. 102, pp: 333-346.
5
Chew, B.P.; Wong, M.W.; Park, J.S. and Wong, T.S., 1999. Dietary b-carotene and astaxanthin but not canthaxanthin stimulate splenocyte function in mice, Anticancer Research. Vol. 19, pp: 5223-5227.
6
Christiansen, R.; Lie, Q. and Torrissen, O.J., 1994. Effect of astaxanthin and vitamin A on growth and survival during first feeding of Atlantic salmon, Salmo salar L. Aquaculture and Fisheries Management. Vol. 25, pp: 903-914.
7
Ellis, A.E., 1990. Lysozyme Assays:In Stolen JS, Fletcher TC, Anderson DP, Roberson BS,Van Muiswinkel WB, editors.Techniques in :Fish Immunology. Fair Haven, NJ: SOS Publications. 650 p.
8
Faghani, T.; Soltani, M.; Shamsae, M. and Matinfar, A., 2013. The effect of dietary natural Astaxanthin (Haematococcus pluvialis) on the growth parameters, carcases and liver chemical composition injuvenile beluga (Huso huso Linnaeus, 1758). Journal of Marine Biology, Islamic Azad University, Ahvaz Branch. Vol. 5, pp: 69-78.
9
Farhangi, M.; Ahmadi, S.; Rafii, G.R.; ghaednia, B. and Taghavi, R., 2013. Effect of different levels of dietary astaxantin on biochemical parameters and non- specific immune in Litopenaeus vannamei against low oxygen stress Journal of Marine Sciences and Technology. Vol. 2, pp: 103-114.
10
Guerin, M.; Huntley, M.E. and Olaizola, M., 2003. Haematococcus astaxanthin: applications for human health and nutrition. Trends Biotechnology. Vol. 21, pp: 210-216.
11
Harikrishnan, R.; Kim, J.; Balasundaram, C. and Heo, M., 2012. Immunomodulatory effects of chitin and chitosan enriched diets in Epinephelus bruneus against Vibrio alginolyticus infection. Aquaculture. Vol. 326, pp: 46-52.
12
Hussein, G.; Sankawa, U.; Goto, H.; Matsumoto, K. and Watanabe, H., 2006. Astaxanthin, a carotenoid with potential in human health and nutrition. Journal of Natural Products. Vol. 69, pp: 443-449.
13
Ilyasov, Y. and Golovin, P., 2003. The effect of NatuRose® on growth, survival and physiological state of twoyear-old marketable sturgeons. On file at Cyanotech Corporation.
14
Kumar, S.; Sahu, N.P.; Pal, A.K.; Choudhury, D.; Yengkokpam, S. and Mukherjee, S.C., 2005. Effect of dietary carbohydrate on haematology, respiratory burst activity and histological changes in Labeo rohita juveniles. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 19, pp: 331-344.
15
Li, M.; Wu, W.; Zhou, P.; Xie, F.; Zhou, Q. and Mai, K., 2015. Comparison effect of dietary astaxanthin and Haematococcus pluvialison growth performance, antioxidant status and immune response of large yellow croaker Pseudosciaena crocea. Aquaculture. Vol. 434, pp: 227-232.
16
Liu, F.; Shi, H.; Guo, Q.; Yu, Y.; Wang, A.; Lv, F. and Shen, W., 2016. Effects of astaxanthin and emodin on the growth, stress resistance and disease resistance of yellow catfish (Pelteobagrus fulvidraco). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 51, pp:125-135.
17
Merchie, G.; Kontara, E.; Lavens, P.; Robles, R.; Kurmaly, K. and Sorgeloos, P., 1998. Effect of vitamin C and astaxanthin on stress and disease resistance of postlarval tiger shrimp, Penaeus monodon (Fabricius). Aquacultue Research. Vol. 29, pp: 579-589.
18
Nakano, T.; Kanmuri, T.; Sato, M. and Takeuchi, M., 1999. Effect of astaxanthin rich red yeast (Phaffia rhodozyma) on oxidative stress in rainbow trout Biochimica et Biophysca Acta. Vol. 426, pp: 119-125.
19
Niu, J.; Tian, L.X.; Liu, Y.J.; Yang, H.J.; Ye, C.X.; Gao, W. and Mai, K.S., 2009. Effect of dietary astaxanthin on growth, survival and stress tolerance of postlarval shrimp,Litopenaeus vannamei. Journal of World Aquacultue Society. Vol. 40, pp:795-802.
20
Ravelo, C.; Magariños, B.; Herrero, M.C.; Costa, L.; Toranzo, A.E. and Romald, J.L., 2006. Use of adjuvanted vaccines to lengthen the protection against Lactococcusis in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss).Aquaculture. Vol. 251, pp: 153-158.
21
Rehulka, J., 2000. Influence of astaxanthin on growth rate, condition, and some blood indices of rainbow trout,Oncorhynchus mykiss Aquaculture. Vol. 190, pp: 27-47.
22
Sugita, H.; Okano, R.; Suzuki, Y.; Iwai, D.; Mizukami, M.; Akiyama, N. and Matsuura, S., 2002. Antibacterial abilities of intestinal bacteria from larvae and juvenile Japanese flounder against fish pathogens.FisheriesScience. Vol.2. No. 68, pp: 1004-1011.
23
Wahli, T.; Verlhac, V.; Griling, P.; Gabaudan, J. and Aebischer, C., 2003. Influence of dietary vitamin C on the wound healing process in rainbow trout (Oncorhyncus mykiss) Aquaculture. Vol. 225, pp: 371-386.
24
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی وضعیت تغذیه گرایی تالاب بین المللی امیرکلایه به منظور مدیریت و حفاظت از آن
تالاب ها از مهم ترین منابع حیات بخش در اکوسیستم ها هستند و با تأمین آب شیرین و سایر خدمات مستقیم و غیرمستقیم، به پایداری جوامع زیستی کمک می کنند. تالاب ها اکوسیستم های حساس و آسیب پذیری هستند، از این رو مدیریت و حفاظت آن ها دارای اهمیت است. این مطالعه با استفاده از شاخص تروفی TSI کارلسون به منظور ارزیابی وضعیت تروفی تالاب بین المللی امیرکلایه واقع دراستان گیلان انجام گرفت. نمونه برداری آب از 5 ایستگاه به صورت ماهانه از فروردین تا شهریور 1397 طی دو فصل انجام شد و پارامترهای مورد استفاده برای ارزیابی کیفیت آب و وضعیت تروفی شامل فسفات کل (TP)، نیتروژن کل (TN) و کلروفیل آ (chl-a) بود. نتایج نشان دهنده وضعیت مزوتروفیک تالاب، با مقدار 41 شاخص کالرسون، درطی مدت پژوهش بود که دلیل آن را می توان ورود مواد آلی و معدنی حاصل از رواناب های کشاورزی و مسکونی اطراف، به تالاب دانست. بنابراین می توان به نقش کاهش سطح دسترسی و حفظ کاربری های اراضی طبیعی و مدیریت و کاهش استفاده از کودهای کشاورزی به منظور مدیریت و احیای تالاب، اشاره کرد.
http://www.aejournal.ir/article_104044_53aae35ed4ae247ff505499ba249d6a1.pdf
2019-12-22
345
350
وضعیت تروفی
شاخص TSI
کیفیت آب
تالاب امیرکلایه
ُسمانه
امینی
sama.amini6546@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، واحد خوراسگان، دانشگاه آزاد اسلامی، اصفهان، ایران
AUTHOR
مژگان
احمدی ندوشن
m.ahmadi1984@gmail.com
2
گروه محیط زیست، واحد خوراسگان، دانشگاه آزاد اسلامی، اصفهان، ایران
LEAD_AUTHOR
آخسته، م.، 1393. بررسی نقش بافرزون در حفاظت از تالاب استیل آستارا با استفاده از GIS و RS. پایان نامه کارشناسی ارشد، رشته محیط زیست، زیستگاه ها و تنوع زیستی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد لاهیجان، گیلان.
1
اسدیان قهفرخی، ن.، 1396. بررسی تروفی دریاچه سد زاینده رود در دو فصل بهار و تابستان در سال 1396. پایان نامه کارشناسی ارشد، رشته محیط زیست، آلودگی های محیط زیست، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد اصفهان (خوراسگان)، اصفهان.
2
اکبرزاده، ع. و اربابی، م.، 1390. مطالعات میدانی جهت بررسی ﭘﺪﻳﺪه ﺗﻐﺬﻳﻪ ﮔﺮاﻳﻲ در تالاب انزلی. مجله تحقیقات نظام سلامت. سال 6، شماره 4، صفحات 698 تا 707.
3
ایزدخواستی، ز.؛ اسماعیلی ساری، ع.؛ فلاحی کپورچالی، م.؛ امیری، م.ج. و کرمی، ش.، 1393. بررسی وضعیت تروفی با مقایسه شاخصهای فیزیکی، شیمیایی و بیولوژیکی (مطالعه موردی: ساحل شهرستان بندر انزلی). فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 6، شماره 3، صفحات 187 تا 195.
4
زبردست، ل. و جعفری، ح.، 1390. ارزیابی روند تغییرات تالاب انزلی با استفاده از سنجش از دور و ارائه راه حل مدیریتی. محیط شناسی. سال 37، شماره 57، صفحات 57 تا 64.
5
سکوتی اسکویی، ر. و رعناقد، ح.، 1397. عوامل موثر بر پدﻳﺪه ﺗﻐﺬﻳﻪ ﮔﺮاﻳﻲ در تالاب کانی برازان، آذربایجان غربی. فصلنامه علمی پژوهشی اکوبیولوژی تالاب. سال 10، شماره 36، صفحات 5 تا 14.
6
صمدی، ج.، 1394. بررسی تأثیر مکانی-زمانی کمی و کیفی پساب های کاربری اراضی بر آلودگی تالاب چغاخور با استفاده از شاخص IRWQI و روش های آماری. مجله تحقیقات منابع آب ایران. دوره 11، شماره 3، صفحات 159 تا 171.
7
صمدی، ج.، 1395. مدلسازی مکانی-زمانی خصوصیات کیفی و وضعیت تغذیه گرایی تالاب چغاخور با استفاده از شاخص های آلودگی و تکنیک های قطعی و زمین آماری GIS. تحقیقات منابع آب ایران. سال 12، شماره 1، صفحات 122 تا 132.
8
عاشوری،ع. و عبدوس،ا.، 1391. زیستگاه های تالابی مهم پرندگان آبزی گیلان. اداره کل محیط زیست استان گیلان. 233 صفحه.
9
فلاح، م. و فاخران، س.، 1396. ارزیابی کیفیت آب تالاب بین المللی انزلی با استفاده از شاخص های کیفی. نشریه آب و توسعه پایدار. سال 4، شماره 2، صفحات 23 تا 30.
10
کاظمی، گ. و امیر نژاد، ر.، 1391. بررسی پر غذایی دریاچه زریبار استان کردستان، با استفاده از شاخص تروفی. دومین کنفرانس برنامه ریزی و مدیریت محیط زیست، دانشگاه منابع طبیعی تهران.
11
گل محمدی، آ. و شریعتی، ف.، 1395. بررسی تروفی تالاب امیرکلایه در استان گیلان با استفاده از شاخصTSI. فصلنامه علمی پژوهشی اکولوژی تالاب. سال 8، شماره 30، صفحات 63 تا 72.
12
مخلوق، آ.؛ نصراله زاده ساروی، ح.؛ پرافکنده، ف.؛ فضلی، ح.؛ میرزایی، ر.؛ حسین پور، ح.؛ کیهان ثانی، ع. و دوستدار، م.، 1396. پایش کیفیت آب و پدیده تغذیه گرایی دریاچه سد مخزنی آزاد سنندج با استفاده از شاخص کیفیت آب ایران و شاخص غنی شدگی کارلسون به منظور فعالیت های آبزی پروری. مجله علمی شیلات ایران. سال 26، شماره 2، صفحات 69 تا 78.
13
موسوی ندوشن، ر.؛ فاطمی، م.؛ اسماعیلی ساری، ع. و وثوقی، ع.، 1387. تعیین تروفی و پتانسیل تولید ماهی در دریاچه چغاخور. مجله علمی شیلات ایران. دوره 2، شماره 2، صفحات 71 تا 75.
14
میرزاجانی،ع.؛ عباسی،ک.؛ سبک آرا،ج.؛ مکارمی، م.؛ عابدینی، ع. و صیاد بورانی،م.، 1391. لیمنولوژی دریاچه الیگو مزوتروف، تهم در استان زنجان. مجله زیست شناسی ایران. جلد 25، شماره 1، صفحات 74 تا 89.
15
Acquavita, A.; Aleffi, I.F.; Benci, C.; Bettoso, N.; Crevatin, E.; Milani, L.; Tamberlich, F.; Toniatti, L.; Barbieri, P.; Licen, S. and Mattassi, G., 2015. Annual characterization of the nutrients and trophic state in a Mediterranean coastal lagoon: The Marano and Grado Lagoon (northern Adriatic Sea). Regional Studies in Marine Science. Vol. 2, pp: 132-144.
16
Carlson, R.E., 1977. A trophic state index of lakes. Limnol Oceanogr. Vol. 22, No. 2, pp: 361-369.
17
Kagalou, I.; Papastergiadou, E.; Beza, P. and Giannouris, E., 2006. Assessment of the trophic state of Kalodiki wetland, western Greece. Fresenius Environmental Bulletin. Vol. 15, No. 2, pp: 136-140.
18
Nouri, J.; Mirbagheri, S.A.; Farrokhian, F.; Jaafarzadeh, N. and Alesheikh, A.A., 2010. Water quality variability and eutrophic state in wet and dry years in wetlands of the semiarid and arid regions. Environ Earth Sci. No. 59, pp: 1397-1400.
19
Olsson, L.; Ye, S.; Yu, X.; Wei, M.; Krauss, K.W. and Brix, H., 2015. Factors influencing CO2 and CH4 emissions from coastal wetlands in the Liaohe Delta, Northeast China. Bio geosciences. Vol. 12, pp: 4965-4977.
20
Rahmati, R.; Pourgholam, R.; Najafpour, S.H. and Doustdar, M., 2011. Trophic Status of a Shallow Lake (North of Iran) Based on the Water Quality and the Phytoplankton Community. World Applied Sciences Journal. Vol. 14, pp: 112-120.
21
Sharma, D. and Shardendu, A., 2012. Determination of Carlson’s Trophic State Index of Kabar wetland of Bihar. Proc Indian Sci Acad. Vol. 78, pp: 189-196.
22
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی توزیع مکانی فاکتورهای فیزیکی و شیمیایی خلیج گرگان در سال 1390
خلیج گرگان از اکوسیستم های نادر کشور است که از نظر اکولوژیک و اقتصادی واجد ارزش های ویژه ای در مقایسه با سایر منابع آبی کشور است. نمونه گیری و آنالیز ماهانه پارامترهای کیفی آب خلیج شامل نیترات، نیتریت، قلیائیت، آمونیاک، شوری، pH، اکسیِژن محلول و دمای آب از 19 نقطه مختلف خلیج گرگان برای توزیع مکانی پارامترهای کیفی آب خلیج انجام شد. نمونه برداری به صورت ماهانه در سال 1390 صورت گرفت. سپس داده های ماهانه با استفاده از نرم افزار 9.0 Surfer مورد درون یابی توسط روش های درون یابی مختلف (کریجینگ، عکس فاصله، رگرسیون چند جمله ای، چند جمله ای موضعی و اسپلاین) قرار گرفتند. روش های ذکر شده با به کارگیری روش اعتبارسنجی متقابل براساس معیار ارزیابی جذر میانگین مجموع مربعات خطا مورد مقایسه قرار گرفتند. نتایج، برتری روش رگرسیون چند جمله ای را نسبت به سایر روش ها نشان داد. بنابراین توزیع مکانی ماهانه پارامترهای مورد مطالعه خلیج با استفاده از این روش و نرم افزارهای 7.10 MATLAB و 9.0 Surfer استخراج و میانگین پارامترهای نیترات، نیتریت، قلیائیت، آمونیاک، شوری، pH، DO و دمای آب در خلیج محاسبه شدند. برطبق نتایج تحقیق حاضر، حداکثر مقادیر پارامتر دما 30 درجه ساتی گراد، پی اچ 8/88، اکسیژن محلول 16/07، شوری 17، قلیائیت 400، نیترت 3/96، نیتریت 0/19 و آونیاک 1/5 اندازه گیری شد. مقایسه بین میانگین این پارامترها در خلیج گرگان و استانداردهای موجود نشان می دهد که خلیج گرگان مکان مناسبی برای پرورش گونه هایی مانند کپور، قزل آلا و فیل ماهی می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_104081_2b6e91f2e8bf0022b38de8993697b1a0.pdf
2019-12-22
351
358
خلیج گرگان
توزیع مکانی
قلیائیت
شوری
اکسیژن محلول
پی اچ
حسن
محمدخانی
khanihm@yahoo.com
1
مرکز تحقیقات ذخایر آبزیان آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
طیبه
عنایت غلام پور
m.enayat@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشگاه پیام نور، صندوق پستی 3697-19395، تهران، ایران
AUTHOR
صفری، م.؛ 1381. تعیین شبکه بهینه پایش آب های زیرزمینی با استفاده از روش های زمین آماری. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده کشاورزی. دانشگاه تربیت مدرس. 89 صفحه.
1
معروفی، ص.؛ ترنجیان،ا. و زارعابیانه، ح.، 1388. ارزیابی روش های زمین آمار جهت تخمین هدایت الکتریکی و pH زه آب های آبراه های دشت همدان- بهار. مجله پژوهش های حفاظت آب و خاک. سال 16، شماره 2، صفحات 169-187.
2
طاهری شهرآئینی، ح.، 1390. جزوه درس مدل سازی کیفی منابع آب. دانشگاه تربیت مدرس، 80 صفحه.
3
Bai, J.; Cui, B.; Chen, B.; Zhan, K.; Deng, W.; Gao, H. and Xiao, R., 2001. Spatial distribution and ecological risk assessment of heavy metals in surface sediments from a typical plateau lake wetland China. Ecological Modelling. Vol. 222, pp: 301-306.
4
Barca, E. and Passarella, G., 2007. Spatial evaluation of the risk of groundwaterquality degradation. A comparison between disjunctive kriging and geostatistical simulation, Environ Monit Assess.
5
Forsythe, K.W. and Marvin, C.H., 2005. Analyzing the spatial distribution of sediment contamination in the Lower Great Lakes. Water Quality Resources Canada. Vol. 40, No. 4, pp: 389-401.
6
Forsythe, K.W. and Marvin, C.H., 2005. Analyzing the Spatial Distribution of Sediment Contamination in the Lower Great Lakes. Journal of Water Qual. Res. Canada. Vol. 40, No. 4, pp: 389-401.
7
Jakubek, D.J. and Forsythe, K.W., 2004. A GIS-based kriging approach for assessing Lake Ontario sediment contamination. Great Lakes Geographer. Vol. 11, No. 1, pp: 1-14.
8
Johnston, K.; VerHoef, J.M.; Krivoruchko, K. and Lccas, N., 2001. Using ArcGIS Geostatistical Analyst. New Yourk, USA. 309 P.
9
Kazemi, S.M. and Hosseini, S.M., 2011. Comparison of spatial interpolation methods for estimating heavy metals in sediments of Caspian Sea. Expert Systems with Applications. Vol. 38, pp: 1632-1649.
10
Lenore, S.; Clesceri, A.E.; Greenberg, P.R. and Trusse, T., l989. Standard Methods for the Examination of water and waste water American Public Health Association.
11
Liu, Y.; Guo, H.C.; Yu, Y.J.; Huang, K. and Wang, Z., 2007. Sediment chemistry and the variation of three altiplano lakes to recent anthropogenic impacts in south western China. Water SA. Vol. 33, No. 2, pp: 305-310.
12
Viera, S.R.; Rielson, D.R. and Biggar J.W., 1983. Geostatistical theory and application to variability of some agronomical properties. Hilgardia. Vol. 51, No. 3, pp: 1-75.
13
Wang, X.J. and Liu, R.M., 2005. Spatial analysis and eutrophication assessment for chlorophyll in Taihu Lake. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 101, pp: 167-174.
14
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی آلودگی فلزات سنگین (نیکل، کادمیوم و وانادیوم) در آب و رسوبات تالاب هورالعظیم استان خوزستان
این تحقیق در سال 1397 با هدف بررسی فلزات سنگین کادمیوم، نیکل و وانادیوم در آب و رسوبات تالاب هورالعظیم در استان خوزستان انجام شد. نمونه برداری براساس استاندارد متد (Standard Method) شماره 3030 A و American Society for Testing and Materials شماره D2488 از 3 ایستگاه تالاب با 9 تکرار انجام شد. جهت سنجش عناصر سنگین از روش طیف سنجی پلاسما جفت شده القایی (ICP) و ترکیب آن با طیف سنجی جرمی (ICP-MS) به کمک دستگاه ICP-OES مدل Varian 710-ES ساخت کشور آمریکا استفاده گردید. بالاترین میزان فلزات کادمیوم، نیکل و وانادیوم در آب تالاب هورالعظیم به ترتیب 0/496، 4/350 و 0/796 میلی گرم در لیتر در ایستگاه دوم و در رسوبات تالاب هورالعظیم به ترتیب 0/073، 203/64 و 80/35 میلی گرم در کیلوگرم در ایستگاه دوم به دست آمد. میانگین میزان فلزات سنگین کادمیوم، نیکل و وانادیوم در آب و رسوبات تالاب هورالعظیم در ایستگاه دوم بالاتر از ایستگاه های اول و سوم به دست آمد. فاکتور آلودگی فلزات کادمیوم و وانادیوم در هر 3 ایستگاه مورد مطالعه در رده آلودگی کم قرار داشتند، اما فلز نیکل در رده آلودگی متوسط تا زیاد بود. درجه آلودگی در 3 ایستگاه مورد مطالعه درمورد فلزات سنگین کادمیوم، نیکل و وانادیوم در رده آلودگی کم قرار دارند. ارزیابی خطر اکولوژیک فلزات کادمیوم و نیکل در رسوبات تالاب هورالعظیم و شاخص پتانسیل ریسک اکولوژیکی در کلاس و رده خطر اکولوژیکی و زیستی کم قرار گرفتند. میزان فلزات سنگین کادمیوم و نیکل در آب تالاب هورالعظیم بالاتر از حد مجاز استانداردهای ملی و جهانی به دست آمد. میزان کادمیوم و وانادیوم در رسوبات تالاب هورالعظیم پایین تر مجاز استانداردهای ملی و جهانی بود، اما میزان نیکل در رسوبات بالاتر از حد آستانه استانداردهای ملی و جهانی به دست آمد.
http://www.aejournal.ir/article_104093_e812ec4fa9df73191ba96973baa48638.pdf
2019-12-22
359
368
آلودگی
استان خوزستان
تالاب هورالعظیم
رسوبات
فلزات سنگین
نازنین
فیروزشاهیان
nazanin.firoozshahian@yahoo.com
1
گروه مهندسی محیط زیست، پردیس علوم و تحقیقات خوزستان، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
AUTHOR
خوشناز
پاینده
payandeh426@gmail.com
2
گروه خاک شناسی، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
سیما
سبزعلی پور
sima.sabzalipour@gmail.com
3
گروه مهندسی محیط زیست، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
AUTHOR
اسدی، ا.؛ فاطمی، س.م.؛ اسکندری، غ. و پاپهن، ف.، 1389. مطالعه ای بر جمعیت ماهیان در تالاب هویزه در ایران. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. جلد 2، شماره 6، صفحات 3 الی 11.
1
انبیا، م.؛ عطایی، ا.، سپهریان، ح. و گرشاسبی، و.، 1384. بررسی روش های مدیریت پسماندهای ناشی از حفاری چاه های نفت در جهت کاهش اثرات منفی زیست محیطی آن ها در مناطق نفتی جنوب (شرکت ملی مناطق نفت خیز جنوب). مجموعه مقالات اولین همایش ملی مهندسی ایمنی و مدیریت HSE. دانشگاه صنعتی شریف، تهران. 8 صفحه.
2
باقری، ح؛.، شارمد، ت.؛ خیرآبادی، و.؛ درویش بسطامی، ک. و باقری، ز.، 1390. سنجش و ارزیابی آلودگی فلزات سنگین در رسوبات رودخانه گرگانرود. فصلنامه اقیانوس شناسی. جلد 2، شماره 5، صفحات 35 الی 39.
3
بهبودی، م. و طهماسبی نژاد، ه.، ۱۳۹۵. ارزیابی فلزات سنگین آب رودخانه کرخه در منطقه کرخه نور، شهرستان هویزه. اولین کنفرانس بین المللی مخاطرات طبیعی و بحران های زیست محیطی ایران، راهکارها و چالش ها. اردبیل، شرکت کیان طرح دانش. 12 صفحه.
4
تدینی، م.، 1389. مدیریت پسماند عملیات حفاری در میادین نفت و گاز. ماهنامه اکتشاف و تولید نفت و گاز. شماره 72، صفحات 65 الی 69.
5
جاسمی زاده، ز.؛ سواری، ا. و ابراهیمی قوام آبادی، ل.، 1393. مقایسه آلاینده های فلزی رسوبات رودخانه بهمنشیر متأثر از پساب های وارده با استانداردهای جهانی. اولین همایش ملی پدافند غیرعامل در علوم دریایی. هرمزگان. صفحات 60 الی 67.
6
خنفریان، س. و سواری، ا.، 1394. بررسی تاثیر پساب صنایع نیشکر در افزایش مقدار آلودگی فلزات سنگین (روی، کادمیوم، سرب و کروم) در آب رسوب وگیاه (نی) تالاب شادگان. کنفرانس بین المللی علوم، مهندسی و فناوری های محیط زیست. تهران، دانشکده محیط زیست دانشگاه تهران. 11 صفحه.
7
چمبری، ش.؛ نبوی، س.م.ب. و جعفرزاده حقیقی، ن.، ۱۳۸۵. بررسی عوامل آلاینده آلی تالاب هورالعظیم با استفاده از فاکتورهای کیفی آب و شاخص های زیستی. سومین همایش ملی بحران های زیست محیطی ایران و راهکارهای بهبود آن ها. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات مرکز اهواز. 13 صفحه.
8
رضوانی، م.؛ قربانیان، ا.ع.، نوجوان، م. و صهبا، م.، 1392. ارزیابی میزان آلودگی فلزات سنگین (کادمیوم، کبالت، سرب، روی و منگنز) در آبخوان اشتهارد. فصلنامه علوم و مهندسی محیط زیست. جلد 1، شماره 1، صفحات 13 الی 21.
9
طباطبایی، ا.؛ گندمکار، م.؛ اسکندری، ص. و طباطبایی، ا.، 1396. بررسی پارامترهای فیزیکوشیمیایی و فلزات سنگین خاک تالاب بند علیخان ورامین و تاثیرات زیست محیطی. فصلنامه مطالعات علوم محیط زیست. جلد 2، شماره 3، صفحات 476 الی 484.
10
عادل زاده، م.ر. و طالبی، ر.، 1395. ارائه روش های مدیریت پسماند حفاری و بررسی تاثیر عملیات حفاری در میدان آزادگان بر کیفیت خاک منطقه هورالعظیم. ماهنامه علمی ـ ترویجی اکتشاف و تولید نفت و گاز. شماره 139، صفحات 95 الی 102.
11
عسکری ساری، ا. و ولایت زاده، م.، 1393. فلزات سنگین در آبزیان. انتشارات دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. چاپ اول، اهواز. 380 صفحه.
12
علی بیگی، ح.؛ میرزایی، ر. و زمانی احمد محمودی، ر.، 1396. بررسی غلظت فلزات سنگین در رسوبات سطحی تالاب چغاخور. مجله محیط شناسی. جلد 43، شماره 1ف صفحات 149 الی 161.
13
فعال، ز.، 1391. بررسی کیفی آب رودخانه بهمشیر با استفاده از جلبک ها به عنوان شاخص های زیستی. فصلنامه علمی محیط زیست. شماره 52، صفحات 1 الی 10.
14
کاظمی نژاد، پ.، ۱۳۸۹. آلودگی تالاب ها و چالش های ناشی از آن و بررسی عوامل آلاینده تالاب هورالعظیم. دومین همایش ملی تالاب های ایران. دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. 11 صفحه.
15
کرباسی، ع. و ولوی، ش.، 1389. تعیین آلودگی فلزات سنگین در رسوبات تالاب بامدژ با استفاده از شاخص ژئوشیمیایی مولر. فصلنامه محیط شناسی. جلد 36، شماره 54، صفحات 1 الی 10.
16
مرتضوی، ث. و صابری نصب، ف.، 1396. پهنه بندی غلظت و ارزیابی ریسک اکولوژیک فلزات سنگین در رسوبات تالاب میقان. فصلنامه اکوهیدرولوژی. جلد 4، شماره 2، صفحات 533 الی 545.
17
مرتضوی، ث. و حاتمی منش، م.، 1396. سنجش بار آلودگی فلزات سنگین در رسوبات و گیاه آبزی علف چشمه (Nasturtium microphyllum) رودخانه بشار یاسوج. مجله مهندسی بهداشت محیط. جلد 5، شماره 2، صفحات 157 الی 172.
18
مرتضوی، ث.؛ رحمانی، ج. و چمنی، ع.، 1396. پایش زیستی فلزات سنگین با استفاده از گیاه نی (Phragmites australis) در تالاب هشیلان کرمانشاه. فصلنامه علوم و تکنولوژی محیط زیست. جلد 19، شماره 4، صفحات 67 الی 79.
19
ولایت زاده، م. و نجفی، م.، 1392. اکولوژی رودخانه ها و تالاب های استان خوزستان. انتشارات ترقی، چاپ اول. 188 صفحه.
20
ولایت زاده، م.، 1395. بررسی میزان فلزات سنگین آهن، روی و مس در عضله برخی ماهیان بومی تالاب هورالعظیم، استان خوزستان. فصلنامه پژوهش های علوم و فنون دریایی. جلد 11، شماره 3، صفحات 88 الی 100.
21
Adewole, G.; Adewole, T. and Fuoma, E., 2010. Environmental aspect of oil and water-based drilling muds and cutting from Dibi and Ewan off-shore wells in the Niger Delta, Nigeria. African Journal of Environmental Science and technology. Vol. 4, No. 5, pp: 284-292.
22
Al-Hejuje, M.M.; Al-Saad, H.T. and Hussain, N.A., 2018. Application of geo-accumulation index (I-geo) for assessment the sediments contamination with heavy metals at Shatt Al-Arab River-Iraq. Journal of Scientific and Engineering Research. Vol. 5, No. 2, pp: 342-351.
23
ASTM.1991. Standard guide for collection, storage, characterization and manipulation of sediments for toxicological testing. Philadelphia. pp: 1390-1391.
24
ASTM. 2000. Annual book of ASTM Standards ASTM. Vol. 11, No. 1, pp: 1971-1995.
25
Bai, J.; Xiao, R.; Zhao, Q.; Lu, Q.; Wang, J. and Reddy, K.R., 2014. Seasonal Dynamics of Trace Elements in Tidal Salt Marsh Soils as Affected by the Flow-Sediment Regulation Regime. PLOS ONE, Vol. 9, No. 9, pp: 1-11.
26
Benzer, S.; Arslan, H.; Uzel, N.; Gul, A. and Yilmaz, M., 2013. Concentrations of metals in water, sediment and tissues of Cyprinus carpio L., 1758 from Mogan Lake (Turkey). Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 12, No. 1, pp: 45-55.
27
Birch, G.F., 1996. Sediment-bound metallic contaminants in Sydney’s estuaries and adjacent offshore, Australia. Estuarine Coastal and Shelf Science. Vol. 42, pp: 31-44.
28
Bonanno, G., 2013. Comparative performance of trace element bioaccumulation and biomonitoring in the plant species Typha domingensis, Phragmites australis and Arundo donax. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 97, pp: 124-130.
29
Borowiak, K.; Kanclerz, J.; Mleczek, M.; Lisiak, M. and Drzewiecka, K., 2016. Accumulation of Cd and Pb in water, sediment and two littoral plants (Phragmites australis, Typha angustifolia) of freshwater ecosystem. Archives of Environmental Protection. Vol. 42, No. 3, pp: 47-57.
30
Chabukdhara, M. and Nema, A.K., 2012. Assessment of heavy metal contamination in Hindon River sediment: A chemo metric and geochemical approach. Chemosphere. Vol. 87, pp: 945-953.
31
Coulibaly, S.; Celestin Atse, B.; Mathias Koffi, K.; Sylla, S.; Justin Konan, K. and Joel Kouassi, N., 2012. Seasonal Accumulations of Some Heavy Metal in Water, Sediment and Tissues of Black-Chinned Tilapia Sarotherodon melanotheron from Bietri Bay in Ebrie Lagoon, Ivory Coast. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 88, pp: 571-576.
32
Defew, L.H.; Mair, J.M. and Guzman, H.M., 2005. An assessment of metal contamination in mangrove sediments and leaves from Punta Mala Bay, Pacific Panama. Marine Pollution Bulletin.Vol. 50, pp: 547-552.
33
Demirak, A.; Yilmaz, F.; Tuna, A.L. and Ozdemir, N., 2006. Heavy metals in water, sediment and tissues of Leuciscuc cephalus from a stream in southwestern Turkey. Chemosphere. Vol. 63, No. 9, pp: 1451-1458.
34
Farkas, A.; Erratico, C. and Vigano, L., 2007. Assessment of the environmental significance of heavy metal pollution in surficial sediments of the River Po. Chemosphere. Vol. 68, No. 4, pp: 761-768.
35
Ghanbarpour, M.R.; Goorzadi, M. and Vahabzade, G., 2014. Spatial variability of heavy metals in surficial sediments: Tajan River Watershed, Iran. Sustainability of Water Quality and Ecology. Vol. 2, pp: 48-58.
36
Guo, W.; Huo, S.; Xi, B.; Zhang, J. and Wu, F., 2015. Heavy metal contamination in sediments from typical lakes in the five geographic regions of China: Distribution, bioavailability, and risk. Ecological Engineering. Vol. 81, pp: 243-255.
37
Hakanson, L., 1980. An ecological risk index for aquatic pollution control a sediment logical approaches. Water Research. Vol. 14, pp: 975-1001.
38
Harikumar, P.S.; Nasir, Y.P. and Mujeebu Rahman, M.P., 2009. Distribution of heavy metals in the core sediments of a tropical wetland system. International Journal of Environmental Science Technology. Vol. 6, No. 2, pp: 225-232.
39
Janadeleh, H.; Hosseini Alhashemi, A. and Nabavi, S.M.B., 2016. Investigation on concentration of elements in wetland sediments and aquatic plants. Global Journal Environment Science Management. Vol. 2, No. 1, pp: 78-93.
40
Janadeleh, H. and Kameli, M.A., 2017. Metals contamination in sediment and their bioaccumulation in plants and three fish species from freshwater ecosystem. Toxin Reviews. Vol. 18, No. 31, pp: 1-9.
41
Jiang, X.; Wang, W.; Wang, S.; Zhang, B. and Hu, J., 2012. Initial identification of heavy metals contamination in Taihu Lake, a eutrophic lake in China. Journal Environment Science. Vol. 24, pp: 1539-1548.
42
Kanclerz, J.; Borowiak, K. and Mleczek, M., 2016. Cadmium and Lead Accumulation in Water and Macrophytes in an Artificial Lake. Annual Set the Environment Protection. pp: 322-336.
43
Kayalvizhi, J.; Nirmala, T. and Medona Mary, R., 2015. Level of heavy metals in soil sediments from wetlands of Theni and dindigul districts. International Journal of Recent Scientific Research. Vol. 6, No. 11, pp: 7372-7376.
44
Krika, A. and Krika, F., 2018. Assessment of Heavy Metals Pollution in Water and Sediments of Djendjen River, North Eastern Algeria. Pollution. Vol. 4, No. 3, pp: 495-502.
45
Loska, K. and Wiechula, D., 2003. Application of principal component analysis for the estimation of source heavy metal contamination in surface sediments from Rybnik Reservoir. Chemosphere Journal. Vol. 51, pp: 723-733.
46
Miloskovic, A. and Simic, V., 2015. Arsenic and Other Trace Elements in Five Edible Fish Species in Relation to Fish Size and Weight and Potential Health Risks for Human Consumption. Polish Journal of Environmental Studies.Vol. 24, No. 1, pp: 199-206.
47
Nwani, C.D.; Nwachi, D.A.; Okogwu, O.I.; Ude, E.F. and Odoh, G.E., 2010. Heavy metals in fish species from lotic freshwater ecosystem at Afikpo, Nigeria. Journal of Environmental Biology. Vol. 31, No. 5, pp: 595-601.
48
Owamah, H.I., 2013. Heavy Metals Determination and Assessment in a Petroleum Impacted River in the Niger Delta Region of Nigeria. Journal Phylogenetics Evol Biology. Vol. 4, pp: 135-140.
49
Pote, J.; Haller, L.; Loizeau, J.; Bravo, A.G.; Sastre, V. and Wildi, W., 2008. Effects of the sewage treatment plant outlet pipe extension on the distribution of contaminants in the sediments of the Bay of Vidy, Lake Geneva, Switzerland. Bio resource technology. Vol.99, PP: 7122-7131.
50
Qin, D.; Jiang, H.; Bai, S.; Tang, S. and Mou, Z., 2015. Determination of 28 trace elements in three farmed cyprinid fish species from Northeast China. Food Control. Vol. 50, pp: 1-8.
51
Rojas de Astudillo, L.; Chang Yen, I. and Bekele, I., 2005. Heavy metals in sediments, mussels and oysters from Trinidad and Venezuela. Revista Biologia Tropical. Vol. 53, No. 1, pp: 41-53.
52
ROPMI. 1999. Manual of oceanographic and pollulant analysis method. Third Edition. Kuwait. pp: 1-100.
53
Sakan, S.M.; Dordevic, D.S.; Manojlovic, D.D. and Predrag, P.S., 2009. Assessment of heavy metal pollutants accumulation in the Tisza river sediments. Journal of Environmental Management. Vol. 90, pp: 3382-3390.
54
Sari, G.L.; Trihadiningrum, Y.; Suci, F.C. and Fashanah Hadining, A., 2018. Identification of Total Petroleum Hydrocarbon and Heavy Metals Levels in Crude Oil Contaminated Soil at Wonocolo Public Mining. The international Journal by the Thai Society of Higher Education Institutes on Environment. Vol. 11, No. 2, pp: 109-117.
55
Staniszewski, R., 2014. Heavy metals in waters and sediments of rivers affected by brown coal mine waters, Polish Journal of Environmental Studies. Vol. 23, No. 6, pp: 2217-2222.
56
Sukumaran, D., 2013. Phytoremediation of heavy metals from industrial effluent using constructed wetland technology. Applied Ecology Environment Science. Vol. 1, pp: 92-97.
57
Tsakovski, S.; Kudlak, B.; Simeonov, V.; Wolska, L.; Garcia, G. and Namiesnik, J., 2012. Relationship between heavy metal distribution in sediment samples and their ecotoxicity by the use of the Hasse diagram technique. Analytica Chimica Acta. Vol. 719, pp: 16-23.
58
Turner, A., 2013. Metal contamination of soils, sediments and dusts in the vicinity of marine leisure boat maintenance facilities. Journal of Soils and Sediments. Vol. 13, No. 6, pp: 1052-1056.
59
Warren, L.A., 1998. Modeling cadmium accumulation by benthic invertebrates in situ: the relative contributions of sediment and overlying water reservoirs to organism cadmium concentrations. Limnology and Oceanography. Vol. 43, pp: 1442-1454.
60
Yang, X.L.; Yuan, X.T.; Zhang, A.G.; Ma, Y.Z.; Li, Q.; Zong, H.M.; Wang, L.J. and Li, X.D., 2015. Spatial distribution and sources of heavy metals and petroleum hydrocarbon in the sand flats of Shuangtaizi Estuary, Bohai Sea of China. Marine Pollution Bulletin. Vol. 95, pp: 503-512.
61
ORIGINAL_ARTICLE
رابطه تغییرات فصلی پارامترهای محیطی با تنوع زیستی و زی توده ماکروفولینگ ها در قفس های صیادی در بندر لنگه
شناسایی ماکروفولینگ ها اولین قدم در کنترل این موجودات مزاحم چسبنـده بر روی ساختارهای موجود در دریاها می باشد. طی چهار مرحله نمونه برداری از تیر 1394 تا خرداد 1395 از قفس های صیادی بندر لنگه، 8 گونه/جنس متعلق به 8 خانواده ماکروفولینگ شناسایی و طبقه بندی شدند. پارامترهای آب شامل دما، شوری، اکسیژن محلول و pH در هر چهار فصل اندازه گیری شدند و به منظور بررسی تنوع زیستی از آنالیز تحلیل کاهشی استفاده شد. ماکروفولینگ غالب در این مطالعه بارناکل Amphibalanus sp. بود که در تمامی فصول مشاهده شد. بیش ترین میانگین زی توده (39/4±214/62 گرم/سانتی مترمربع) در ماکروفولینگ ها متعلق به آب پاش دریایی Perophora sp. در فصل پاییز بود. اختلاف معنی داری بین میانگین وزن ماکروفولینگ ها در فصول مختلف و هم چنین بین میانگین پارامترهای آب در چهار فصل مشاهده گردید (0/05>p). نتایج حاصل از آنالیز تحلیل کاهشی و همبستگی پیرسون نشان داد که دما و اکسیژن محلول آب دو پارامتر محیطی موثر بر تنوع و زی توده بیوفولینگ ها در بندرلنگه بودند.
http://www.aejournal.ir/article_104117_9db0a2d7147ba797753b81565dfee5ac.pdf
2019-12-22
369
376
ماکروفولینگ
دما
قفس صیادی
بندر لنگه
مریم
شهبازی
maryamshahbazi81@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
ایمان
سوری نژاد
i_sourinezhad@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
سعید
گرگین
sgorgin@gau.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
گیتی
میرمحمد صادقی
asila.sn@gmail.com
4
دانشکده مهندسی پلیمر و رنگ، دانشگاه صنعتی امیرکبیر، تهران، ایران
AUTHOR
مرتضی
یوسف زادی
morteza110110@gmail.com
5
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
بهروزی راد،ب. و احمدی، م.ر. 1387. بررسی مقایسه ای کفزیان بزرگ تالاب های بین المللی کلاهی و تیاب در سواحل خلیج فارس. مجله محیط شناسی. دوره 23، شماره 4، صفحات 21 تا 38.
1
خدابخش، ا.؛ نبوی، س.م.ب.؛ قبادی، ش.؛ خدابخش، ا. و خدابخش، ح.، 1387. بررسی تاثیر پارامترهای محیطی بر تنوع بیوفولینگ ها در اسکله بندر امام خمینی. مجله علمی شیلات ایران. سال 2، شماره 2، صفحات 35 تا 46.
2
گلی نیا، پ. و نصرالهی، ع.، 1396. اثر سطح بستر بر جوامع چسبنده زیستی سواحل جنوب غربی دریای خزر. فصلنامه علوم محیطی. دوره 15، شماره 1، صفحات 127 تا 140.
3
Abbott I.A. and Hollenberg, G.J., 1976. Marine algae of California. Stanford University Press. Stanford, CA. 827 p.
4
Allan, J.D. and Castillo, M.M., 2007. Stream ecology: Structure and function of running waters (2st edn). Springer Netherlands. 436 p.
5
Basson, P.W., 1978. Marine algae of the Arabian gulf coast of Saudi Arabia (first half). Bot. Mar. Vol. 22, pp: 47-64.
6
Belal, A.A.; El-Sawy, M. and Dar, M.A., 2016. The effect of water quality on the distribution of macro-benthic fauna in Western Lagoon and Timsah Lake, Egypt.I. The Egyptian Journal of Aquatic Research. Vol. 42, pp: 437-448.
7
Beveridge, M., 2004. Cage Aquaculture (3st edn). Blackwell. 380 p.
8
Braune, W. and Guiry, M.D., 2011. Seaweeds: a colour guide to common benthic green, brown and red algae of the world’s oceans. Koeltz Scientific Books, Germany. 601 p.
9
De Clerck, O. and Coppejans, E., 1996. Marine algae of the Jubail Marine Wildlife Sanctuary, Saudi Arabia. In: (Krupp, F.; Abuzinad, A.H. and Nader, I.A., eds) A marine wildlife sanctuary for the Arabian Gulf. Environmental research and conservation following the 1991 Gulf War Oil Spill. NCWCD, Riyadh and Senckenberg Research Institute, Frankfurt. pp: 199-289.
10
Duran, A.; Collado-Vides, L.E. and Burkepile, D., 2016. Seasonal regulation of herbivory and nutrient effects on macroalgal recruitment andsuccession in a Florida coral reef. PeerJ,4: e2643.DOI: 10.7717/peerj.2643.
11
Hellio, C.; Marechal, J.P.; Veron, B.; Bremer, G.; Clare, A.S., and Gal, Y.L., 2004. Seasonal Variation of Antifouling Activities of Marine Algae from the Brittany Coast (France). Marine Biotechnology. Vol. 6, pp: 67-82. DOI: 10.1007/s10126-003-0020-x.
12
Hodson, S.L.; Lewis, T.E. and Burke, C.M., 1997. Biofouling of fish-cage netting: efficacy and problems of in situ cleaning. Aquaculture. Vol. 152, pp: 77-90. DOI: 10.1016/S0044-8486(97)00007-0.
13
Jegadeesan, P. and Ayyakkannu, K., 1992. Seasonal variation of benthic fauna in marine zone of Coleroon estuary and inshore waters, south east coast of India. Indian Journal Marine Science. Vol. 21, pp: 67-69.
14
Jenkins, S.R. and Martins, G.M., 2010. Succession on Hard Substrata. In: Dürr, S., Thomason, J.C., (ed) Biofouling, Chapter 4. Blackwell Publishing Ltd. pp: 60-72.
15
Jha, B.; Reddy, C.R.K.; Thakur, M.C. and Rao, M.U., 2009. Seaweeds of India. Springer: The diversity and distribution of seaweeds of Gujarat Coast.
16
Kassah, J.E., 2012. Development of biofouling on salmon cage nets and the effects of anti-fouling treatments on the survival of the hydroid (Ectopleura larynx). Dissertation. Department of Biology, Norwegian University of Science and Technology (NTNU).
17
Lehaitre, M.; Delauney, L. and Compère, C., 2008. Biofouling and underwater measurement. In: Babin, M.; Roesler, C.S. and Cullen, J.J., (ed) Real-Time Coastal Observing Systems for Marine Ecosystem Dynamics and Harmful Algal Blooms: Theory, instrumentation and modeling, Edition: Oceanographic Methodology series. Unesco publishing, Chapter. Vol. 12, pp: 463-493.
18
Mayer-pinto, M.; Viana, M.S.; Lavrado, H.P.; Silva, T.A. and Silva, S.H.G., 2000. Epibiosis on barnacles at Angra dos, R.J: Eutrophication Effects. Nauplius. Vol. 8, No. 1, pp: 55-61.
19
Milne, P.H., 1970. English, Book, Illustrated edition: Fish farming: a guide to the design and construction of net enclosures. H.M.S.O, Edinburgh. 31 p.
20
Mosavi Dehmordi, L.; Karami, L.; Safarpor, N. and Alesadi, B., 2011.Taxonomic identification and distribution of biofouling organisms in Deilam port in Iran. Ecology and the Natural Environment. Vol. 3, No. 14, pp: 441-445. DOI: 10.5897/JENE11.035.
21
Piazza, V.; Roussis, V.; Garaventa, F.; Greco, G.; Smyrniotopoulos, V.; Vagias, C. and Faimali, M., 2011. Terpenes from the red alga Sphaerococcus coronopifolius inhibit the settlement of barnacles. Marine Biotechnology. Vol. 13, No. 4, pp: 764-772. DOI: 10.1007/s10126-010-9337-4.
22
Phang, I.Y.; Aldred, N.; Clare, A.S. and Vancso, G.J., 2008. Towards a nanomechanical basis for temporary adhesion in barnacle cyprids (Semibalanus balanoides). The royal society Interface. Vol. 5, pp: 397-401.
23
Prendergast, G.S., 2010. Settlement and behavior of marine fouling organism. In: Dürr, S. and Thomason, J.C., (ed) Biofouling, Chapter 3. Blackwell Publishing Ltd. pp: 30-59.
24
Pudota, J., 2011. Seasonal variations in biofouling and plankton community connected to a large scale salmon farm. Dissertation. Norwegian University of Science and Technology Department of Biology. 51 p.
25
Railkin, A.I., 2003. Marine befouling: colonization processes and defenses. CRC Press, United States. 300 p.
26
Riley, J.P. and Chester, R., 1971. Introduction to marine chemistry. Academic Press, London, New York. 465 p.
27
Shannon, C.E. and Weaver, W., 1949. The Mathematical Theory of Communication. University of Illinois Press, Urbana.
28
Ter Braak, C.J.F. and Smilauer, P., 2002. CANOCO Reference manual and CanoDraw for Windows User's guide: Software for Canonical Community Ordination (version 4.5). Microcomputer Power.
29
Trono, G.C., 2003. Field Guide and Atlas of the seaweed resources of the Philippines. Bookmark Inc Makati City Philippines.
30
Wahl, M., 1989.Marine epibiosis. I. Fouling and antifouling: some basic aspects. Marine Ecology Progress Series. Vol. 58, pp: 175-189.
31
ORIGINAL_ARTICLE
گزارش حضور اسفنج Clathria sp روی کلنی های زنده مرجان در جزیره کیش، خلیج فارس
آبسنگ های مرجانی جزو متنوع ترین و پرتولید ترین اکوسیستم های دریایی می باشند که فاکتورهای زیستی و غیر زیستی مختلفی سلامت و حیات این اکوسیستم ها را تهدید می کنند. یکی از فاکتورهای زیستی موثر در تخریب مرجان ها، حضور موجوداتی است که بر روی کلنی های مرجان، توانایی زندگی و رشد دارند. Clathria sp نوعی اسفنج قشری است که توانایی رشد روی سطح کلنی های زنده مرجان را دارد و به نظر می رسد با تولید ترکیبات سمی می تواند منجر به مرگ مرجان ها شود. در رابطه با حضور این نوع اسفنج روی اجتماعات مرجانی خلیج فارس اطلاعاتی در دسترس نیست و هدف از مطالعه حاضر بـررسی حضور آن روی کلنی های زنده مرجان های جزیره کیش می باشد. به این منظور، 4 ایستگاه در بخش های شرق تا جنوب شرقی جزیره کیش تعیین شد و در هر ایستگاه، در طول ترانسکت هایی به طول 20 متر، کلنی های مرجان به صورت مستقیم و تک به تک مورد بررسی بصری قرار گرفت. بر اساس نتایج اسفنج Clathria sp روی 18 درصد (9±) از کلنی هایPorites sp جزیره کیش حضور داشتند.
http://www.aejournal.ir/article_104119_4babf2d244cf8ce27393c9be5f12acad.pdf
2019-12-22
377
380
Clathria sp
اسفنج های قشری
آبسنگ های مرجانی
Porites sp
جزیره کیش
خلیج فارس
مهسا
علی دوست سلیمی
m.alidoustsalimi@gmail.com
1
گروه علوم دریایی، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
پرگل
قوام مصطفوی
mostafavi_pa@srbiau.ac.ir
2
گروه علوم دریایی، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
گرتا
ابی
greta@hawaii.edu
3
موسسه زیست شناسی دریا هاوایی، کانیوهه، امریکا
AUTHOR
سید محمدرضا
فاطمی
reza_fatemi@hotmail.com
4
گروه علوم دریایی، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
Aerts, L.A.M. and Seost, R.W.M., 1997. Quantification of sponge/coral interaction in a physically stressed reef community, NE Colombia. Mar. Ecol. Prog. Ser. Vol. 148, pp: 125-134.
1
Alidoost Salimi, P.; Mostafavi, P.G.; Chen, C.A.; Fatemi, S.M.R. and Pichon, M., 2018. The scleractinia (Cnidaria: Anthozoa) of Abu-Musa and Sirri Islands, Persian Gulf. Zool Stud. Vol. 57, No. 56, pp:1-34.
2
Avila, E. and Carballo, J.L., 2009. A preliminary assessment of the in- vasiveness of the Indo-Pacific sponge Chalinula nematifera on coral communities from the tropical Eastern Pacific. Bio Inva Sion. Vol. 11, pp: 257-264.
3
Benzoni, F.; Eisinger, M. and Klaus, R., 2008. Coral disease mimic: sponge attacks Porites lutea in Yemen. Coral Reefs. Vol. 27, 695 p.
4
Benzoni, F.; Pichon, M.; Hazeem, S.A. and Galli, P. 2006. The coral reefs of the Northern Arabian Gulf: stability over time in extreme environmental conditions? Proceeding of 10th International Coral Reef symposium. pp: 969-975.
5
Coles, S.L. and Bolick, H., 2007. Invasive introduced sponge Mycale grandis overgrowth reef corals in Kaneohe Bay, Oahu, Hawaii. Coral Reefs. Vol. 26, 911 p.
6
Descombes, P.; Wisz, M.S.; Leprieur, F.; Parravicini, V.; Heine, C.; Olsen, S.M.; Swingedouw, D.; Kulbicki, M. and Pellissier, L., 2015. Forecasted coral reef decline in marine biodiversity hotspots under climate change Glob. Chang. Biol. Vol. 21, pp: 2479-2487.
7
De Voogd, N.J.; Cleary, D.F.R. and Dekker, F., 2013. The coral-killing sponge Terpios hoshinota invades Indonesia. Coral Reefs, Vol. 32, 755 p.
8
Elliff, C.I. and Kikuchi, R.K.P., 2017. Ecosystem services provided by coral reefs in a Southwestern Atlantic Archipelago Ocean Coast. Manag. Vol. 136, pp: 49-55.
9
Fatemi, S.M.R. and Shokri, M.R., 2001. Iranian coral reefs status with particular reference to Kish Island, Persian Gulf. International Coral Reef Initiative, Indian Ocean Regional Workshop, Mozambique.
10
George, J.D. and John, D.M., 2004. The coral reefs of Abu Dhabi: past, present and future. In: Marine atlas of Abu Dhabi. Emirates Heritage Club. Milan. 275 P.
11
Hoeksema, B.W.; Ten Hove, H.A. and Berumen, M.L., 2016. Christmas tree worms evade smothering by a coral-killing sponge in the Red Sea. Marine Biodiversity. Vol. 46, No. 1, pp:15-16.
12
Raj, K.D.; Bharath, M.S.; Mathews, G.; Aeby, G.S. and Edward, J.K.E., 2018. Coral-killing sponge Terpios hoshinota invades the corals of Gulf of Mannar, Southeast India. Current Science. Vol. 114, No. 5, pp: 1117-1119.
13
Raymundo, L.; Couch, C.S. and Harvell, C.D., 2008. A coral disease handbook: Guidelines for assessment, monitoring and management. Coral Reef Targeted Research and Capacity for Management Program. St Lucia, Australia.
14
Riegl, B.M. and Purkis, S.J., 2012. Coral Reefs of the Gulf: adaptation to climatic extremes. Coral Reefs of the World 3. Springer Dordrecht Heidelberg, New York. pp: 72-93.
15
Seguin, F.; Brun, O.L.; Hirst, R.; Al-Thary, I. and Dutrieux, E., 2008. Large coral transplantation in Bal-Haf (Yemen): an opportunity to save corals during the construction of a Liquefied Natural plant using innovation techniques. Proceedings of the 11th international coral reef symposium, Ft, Florida.
16
Shi, Q.; Liu, G.H.; Yan, H.Q. and Zhang, H.L., 2012. Black disease (Terpios hoshinota): a probable cause for the rapid coral mortality at the northern reef of Yongxing Island in the South China Sea. Ambio. Vol. 41, No. 5, pp: 446-55.
17
Turicchia, E.; Hoeksema, B.W. and Ponti, M., 2018. The coral-killing sponge Chalinula nematifera as a common substrate generalist in Komodo National Park, Indonesia. Marine Biology Research. Vol.14, No. 8, pp: 827-833.
18
Wulff, J.L., 2006. Ecological interactions of marine sponges. Canadian J of Zoology. Vol. 84, pp: 145-152.
19
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تاثیر سطوح مختلف گوگرد، کود دامی و برگ کاج بر عملکرد باکتری تیوباسیلوس در جذب عناصر کم مصرف در خاک
یکی از راهکارهای افزایش قابلیت جذب عناصر کم مصرف در خاکهای آهکی، استفاده از مواد اصلاح کننده است. در این پژوهش به بررسی تاثیر سطوح مختلف گوگرد و ماده آلی بر قابلیت جذب عناصر و هم چنین برخی ویژگی های شیمیایی خاک غنی از عناصر کم مصرف پرداخته شده است. این آزمایش در قالب طرح کاملاً تصادفی به صورت فاکتوریل با سه تکرار انجام گردید. تیمارها شامل دو سطح گوگرد (صفر و 250 کیلوگرم در هکتار) و دو نوع ماده آلی کود گوسفندی و بقایای کاج (20درصد حجمی خاک) به همراه شاهد (بدون اضافه کردن ماده آلی و گوگرد) بودند. نتایج نشان داد افزودن کود دامی و بقایای کاج به خاک باعث افزایش معنی دار کربن آلی، نیتروژن کل و هم چنین افزایش معنی دار غلظت منگنز خاک می گردد. تأثیر کاربرد گوگرد نیز بر غلظت آهن و منگنز قابل جذب در تیمارهای حاوی گوگرد به طور معنی داری بیش تر از تیمار شاهد گزارش گردید. براساس نتایج این مطالعه، کاربرد گوگرد و کودهای آلی می تواند از طریق افزایش عملکرد باکتری تیوباسلوس در خاک و بهبود برخی از ویژگی های شیمیایی خاک چون کربن آلی و نیتروژن کل بر افزایش قابلیت جذب عناصر کم مصرف در خاک موثر باشد.
http://www.aejournal.ir/article_104124_bfe7adbfa7d6e1c14e4e36b3eb2420be.pdf
2019-12-22
381
388
عناصر کم مصرف
گوگرد
کود دامی
بقایای کاج
باکتری تیوباسیلوس
ریحانه
دهقان
reyhane.dehghan.1989@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه یزد، یزد، ایران
AUTHOR
علی اکبر
کریمیان
a.karimian@yazd.ac.ir
2
گروه مرتع و آبخیزداری، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه یزد، یزد، ایران
AUTHOR
سمیه
قاسمی
s.ghasemi@yazd.ac.ir
3
گروه علوم خاک، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه یزد، یزد، ایران
AUTHOR
ملیحه
امینی
amini.malihe@gmail.com
4
گروه علوم و مهندسی محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه جیرفت، جیرفت، ایران
LEAD_AUTHOR
احیایی، م. و بهبهانی زاده، ع. ا.، 1372. شرح روش های تجزیه شیمیایی خاک. جلد اول. نشریه موسسات تحقیقات خاک و آب. سازمان تحقیقات و آموزش کشاورزی، وزارت کشاورزی. تهران.
1
اخوان، ز.؛ فلاح، ع. و رضایی عمروآبادی، ش.، 1391. بررسی تاثیر گوگرد و مایه تلقیح تیوباسیلوس بر غلظت آهن، روی، مس و منگنز در گیاه کلزا در شرایط گلخانه ای. مجله زراعت و اصلاح نباتات. جلد 8، شماره 3، صفحات 197 تا 191.
2
بشارتی کلایه، ح.، 1377. بررسی اثر گوگرد همراه با گونه های تیوباسیلوس در افزایش جذب برخی از عناصر در خاک. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده کشاورزی. دانشگاه تهران.
3
چقازردی، ح.م. و بهشتی آلآقا، ع.، 1391. ارزیابی اثر گوگرد و کود دامی بر خصوصیات رشد گیاه ذرت (سینگل کراس 704) و اسیدیته خاک. نشریه پژوهش های زراعی ایران. جلد 11، صفحات 162 تا 170.
4
دیالمی، ح. و محبی، ع.، 1389. اثر کاربرد گوگرد به همراه مایه تلقیح تیوباسیلوس و کود دامی بر میزان عناصر غذایی برگ و شاخص های رشد رویشی نهال های خرما رقم برحی. نشریه علوم باغبانی. جلد 24، شماره 2، صفحات 194 تا 189.
5
سلیم پور، س.؛ خاوازی، ک.؛ نادیان، ح. و بشارتی، ح.، 1389. تاثیر خاک فسفات همراه با گوگرد و ریزجاندارن بر عملکرد و ترکیب شیمیایی کلزا. مجله پژوهش های خاک. جلد 24، شماره 1، صفحات 9 تا 19.
6
صبور، م.؛ شکری، م.؛ سماوات، س. و فراهانی، م.، 1389. بررسی تاثیر مقادیر گوگرد و کمپوست پسماند شهری بر pH خاک و جذب عناصر ریزمغذی علوفه ای. علوم و تکنولوژِی محیط زیست. جلد 15، شماره 3، صفحات 106 تا 117.
7
صلحی، م. و درخشنده، ع.، 1378. بررسی اثر گوگرد در قابلیت جذب عناصر کم مصرف بر روی درختان سیب اصفهان. چکیده مقالات ششمین کنگره علوم خاک ایران. دانشگاه فردوسی مشهد. صفحات 167 تا 176.
8
عبدی، س.؛ تاجبخش، م.؛ عبدالهی مندولکانی، ب. و رسولی صدقیانی، م.، 1391. بررسی اثر کود سبز بر میزان ماده آلی و نیتروژن خاک. مجله دانش زراعت. جلد 5، شماره 7، صفحات 127 تا 144.
9
ملکوتی، م. و همایی، م.، 1373. حاصلخیزی خاک های مناطق خشک. انتشارات دانشگاه تربیت مدرس. جلد 1، 518 صفحه.
10
Ahmadi, M., 2010. Effect of zinc and nitrogen fertilizer rates on yield and yield components of oilseed rape (Brassica napus L.). World Applied Sciences Journal. Vol. 10, No. 3, pp: 298-303.
11
Ansori, A. and Gholami, A., 2015. Improved nutrient uptake and growth of maize in response to inoculation with Thiobacillus and Mycorrhiza on an alkaline soil. Journal of Communication in Soil Science and Plant Analysis, Vol. 46, No. 17, pp: 2111-2126.
12
Creamer, N.G. and Baldwin, K.R., 2000. An evaluation of summer cover crops for use in vegetable production systems in North Carolina. Hort Science. Vol. 35, No. 4, pp: 600-603.
13
Deluca, T.H.; Skogley, E.O. and Engel, R.E., 1989. Band applied elemental sulfur to enhance the phytoavailability of phosphorus in alkaline calcareous soils. Biology and fertility of soils. Vol. 7, No. 4, pp: 346-350.
14
Eghball, B.; Ginting, D. and Gilley, J.E., 2004. Residual effects of manure and compost applications on corn production and soil properties. Agronomy journal. Vol. 96, No. 2, pp: 442-447.
15
Erdem, H.; Torun, M.B.; Erdem, N.; Yazıcı, A.; Tolay, I.; Gunal, E. and Özkutlu, F., 2016. Effects of different forms and doses of sulfur application on wheat. Turkish Journal of Agriculture, Food Science and Technology.Vol. 4, No. 11, pp: 957-961.
16
Hababi, A.; Javanmard, A.; Mosavi, S.B.; Rezaei, M. and Sabaghnia, N., 2013. Effect of green manure on some soil physicochemical characteristics. International Journal of Agronomy and Plant Production. Vol. 4, No. 11, pp: 3089-3095.
17
Hitsuda, K.; Yamada, M. and Klepker, D., 2005. Sulfur requirement of eight crops at early stages of growth. Agronomy Journal. Vol. 97, No. 1, pp: 155-159.
18
Kalbas, M.; Filsoof, F. and Rezai‐Nejad, Y., 1988. Effect of sulfur treatments on yield and uptake of Fe, Zn, and Mn by corn, sorghum, and soybeans. Journal of plant nutrition. Vol. 11, No. 6, pp: 1353-1360.
19
Kaplan, M. and Orman, Ş., 1998. Effect of elemental sulphur and sulphur containing waste in a calcareous soil in Turkey. Journal of plant nutrition. Vol. 21, No. 8, pp: 1655-1665.
20
Karimizarchi, M.; Aminuddin, H.; Khanif, M.Y. and Radziah, O., 2014. Elemental sulfur application effects on nutrient availability and sweet maize response (Zea mays L.) in a high pH soil of Malaysia. Malaysian Journal of Soil Science. Vol. 18, pp: 75-86.
21
Mao, J.; Olk, D.C.; Fang, X.; He, Z. and Schmidt-Rohr, K., 2008. Influence of animal manure application on the chemical structures of soil organic matter as investigated by advanced solid state NMR and FT-IR spectroscopy. Geoderma. Vol. 146, No. 1-2, pp: 353-362.
22
Matos, E.D.S.; Mendonça, E.D.S.; Lima, P.C.D.; Coelho, M.S.; Mateus, R.F. and Cardoso, I.M., 2008. Green manure in coffee systems in the region of Zona da Mata, Minas Gerais: characteristics and kinetics of carbon and nitrogen mineralization. Revista Brasileira de Ciência do Solo. Vol. 32, No. 5, pp: 2027-2035.
23
Mirzashahi, K.; Pishdarfaradaneh, M. and Nourgholipour, F., 2010. Effects different rates of nitrogen and sulphur application on canola yield in north of Khuzestan. Research Agriculture Science. Vol. 6, No. 2, pp: 107- 112.
24
Pedra, F.; Polo, A.; Ribeiro, A. and Domingues, H., 2007. Effects of municipal solid waste compost and sewage sludge on mineralization of soil organic matter. Soil Biology and Biochemistry. Vol. 39, No. 6, pp: 1375-1382.
25
Singh, A.L. and Chaudhari, V., 1997. Sulphur and micronutrient nutrition of groundnut in a calcareous soil. Journal of Agronomy and Crop Science. Vol. 179, No. 2, pp: 107-114.
26
Talger, L.; Lauringson, E.; Roostalu, H. and Astover, A., 2009. The effect of grren manures on application on the yields and yield quality of spring wheat. Agronomy Journal. Vol. 7, No. 1, pp: 125-132.
27
ORIGINAL_ARTICLE
جداسازی و بررسی میزان فعالیت آنزیم پروتئاز در باسیلوس های جداسازی شده از چشمههای آب گرم محلات
پروتئازها پرمصرفترین آنزیمهای صنعتی هستند که کاربردهای زیادی در زیستفناوری دارند. بهطوری که حدود ۶۰ درصد از بازار جهانی آنزیمهای صنعتی را به خود اختصاص دادهاند. میکروبها به دلیل رشد سریع، سهولت کشت، دستکاری ژنتیکی در جهت تولید بهینه آنزیم، از منابع عمده تولید پروتئازها به شمار میروند. این مطالعه با هدف جداسازی گونههای باسیلوس گرمادوست مولد آنزیم پروتئاز از چشمههای آب گرم محلات واقع در استان مرکزی و ارزیابی قابلیت تولید آنزیم پروتئاز در این گونهها انجام شده است. بهمنظور جداسازی و شناسایی اولیه میکروارگانیسمهای دارای فعالیت پروتئولیتیک از محیط کشت Skim milk agar همراه با آزمونهای بیوشیمیایی استفاده شد. وجود ژن پروتئاز در گونههای باکتریایی با روش PCR بررسی گردید و جهت تشخیص گونههای باکتریایی ژن 16 SrRNA به روش PCR تکثیر و تعیین توالی گردید. سنجش فعالیت پروتئاز به روش لوری صورت گرفت و بهترین گونه باسیلوس ازنظر فعالیت پروتئاز شناسایی گردید. ۹ گونه باکتریایی توسط تستهای بیوشیمیایی بهعنوان گونههای برتر مولد آنزیم پروتئاز جداسازی شدند. در بررسی بیان ژن پروتئاز و توالی یابی ژن 16 SrRNA، ۷ گونه باکتریایی بیش ترین قرابت را با گونههای باسیلوس نشان دادند. در سنجش فعالیت آنزیم به ترتیب سه گونه باکتریایی DA3، DA2 و BN2 در دمای ۴۷ درجه سانتیگراد و در pH معادل ۸ بیش ترین فعالیت را داشتند. با توجه به کاربردهای فراوان آنزیم پروتئاز در صنعت به نظر میرسد استفاده از سویههای محلی میتواند در دستیابی به تولید بالای آنزیم پروتئاز و بینیازی کشور به واردات این محصول مفید واقع شود.
http://www.aejournal.ir/article_102420_8085d3b5af84dfafa9d33ec922d00059.pdf
2019-12-22
389
396
آنزیم پروتئاز
پروتئولایتیک
باسیلوس
مقاومت گرمایی
جداسازی
سید داود
حسینی
hosseinida@yahoo.com
1
موسسه تحقیقات واکسن و سرم سازی رازی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، شعبه اراک، ایران
LEAD_AUTHOR
مرضیه
حصاری
marzieh.hesaree@gmail.com
2
گروه زیستشناسی، دانشکده علوم پایه، واحد بروجرد، دانشگاه آزاد اسلامی، بروجرد، ایران
AUTHOR
بدویی دلفارد، ا.؛ امیری، پ.؛ رمضانی پور، ن.؛ کرمی، ز. و قنبری،ب.،۱۳۹۴. تولید پروتئاز قلیایی توسط باسیلوس تیکیولنسس سویه FJSH2 جداشده از فاضلاب کشتارگاه دام جیرفت. مجله دنیای میکروبها. سال 8، شماره 1، صفحات 54 تا 63.
1
Abdel-Naby, M.A.; Ahmed, S.A.; Wehaidy, H.R. and El Mahdy, S.A., 2017. Catalytic, kinetic and thermodynamic properties of stabilized Bacillus stearothermophilus alkaline protease. Int J Biol Macromol. Vol. 96, pp: 265-271.
2
Bajaj, B.K. and Jamwal, G., 2013. Thermostable alkaline protease production from Bacillus pumilus D-6 by using agro-residues as substrates. Advances in Enzyme Research. Vol. 1, No. 2, pp: 30-36.
3
Baron, E.J. and Finegold, S.M., 1990. Baily and Scott’s Diagnostic Microbiology. 8nd Ed. The Mosby Company, C.V. St. Louis, Baltmore, Philadelphia, Toronto. pp: 451-456.
4
Cupp-Enyard, C., 2008. Sigma's non-specific protease activity assay-casein as a substrate. JoVE. Vol. 19, pp: 899.
5
De Azeredo, L.; Freire, D.; Soares, R.; Leite, S. and Coelho, R., 2004. Production and partial characterization of thermophilic proteases from Streptomyces sp. isolated from Brazilian cerrado soil. Enzyme and Microbial Technology. Vol. 34, No. 3, pp: 354-358.
6
Dubal, S.A.; Tilkari, Y.P.; Momin, S. and Borkar, I.V., 2008. Biotechnological routes in flavour industries. Eendo. pp: 14-15.
7
Feng, Y.; Yang, W.; Ong, S.; Hu, J. and Ng, W., 2001. Fermentation of starch for enhanced alkaline protease production by constructing an alkalophilic Bacillus pumilus strain. Applied microbiology and biotechnology. Vol. 57, No. 1-2, pp: 153-160.
8
Haddar, A.; Fakhfakh-Zouari, N.; Hmidet, N.; Frikha, F.; Nasri, M. and Kamoun, A.S., 2010. Low-cost fermentation medium for alkaline protease production by Bacillus mojavensis A21 usinghulled grain of wheat and sardinella peptone. Journal of bioscience and bioengineering. Vol. 110, No. 3, pp: 288-294.
9
Mehak, B.; Rameshwar, T.;Puneet, K.; Lata, N. and Pratyoosh, S., 2016. An Alkaline Protease from Bacillus pumilus MP 27: Functional Analysis of Its Binding Model toward Its Applications As Detergent Additive. Vol. 7, 1195 p.
10
Joo, H.S. and Chang, C.S., 2005. Oxidant and SDS‐stable alkaline protease from a halo‐tolerant Bacillus clausii I‐52: enhanced production and simple purification. Journal of applied microbiology. Vol. 98, No. 2, pp: 491-497.
11
Kuberan, T.; Sangaralingam, S. and Thirumalaiarasu, V., 2010. Isolation and optimization of Protease producing Bacteria from Halophilic soil. Journal of the belgian society of radiology. Vol. 1, No. 3, pp: 163-174.
12
Kumar, R. and Vats, R., 2010. Protease production by Bacillus subtilis immobilized on different matrices. New York Science Journal. Vol. 3, No. 7, pp: 20-24.
13
Marnett, A.B. and Craik, C.S., 2005. Papa's got a brand new tag: advances in identification of proteases and their substrates. Trends in biotechnology. Vol. 23, No. 2, pp: 59-64.
14
Manni, L.; Jellouli, K.; Ghorbel-Bellaaj, O.; Agrebi, R. and Haddar, A., 2010. An oxidant-and solvent-stable protease produced by Bacillus cereus SV1: application in the deproteinization of shrimp wastes and as a laundry detergent additive. Applied biochemistry and biotechnology. Vol. 160, No. 8, pp: 2308-2321.
15
Mehta, V.J.; Thumar, J.T. and Singh, S.P., 2006. Production of alkaline protease from an alkaliphilic actinomycete. Bioresource technology. Vol. 97, No. 14, pp: 1650-1654.
16
Navarrete, A.A.; Barreto, C.C.; Arnaldo, M. and Tsai, S.M., 2013. Molecular detection on culture medium of Acidobacteria from Amazon soils. Microbiology Discovery. Vol. 1, No. 1, pp: 1-9.
17
Olajuyigbe, F.M. and Ehiosun, K.I., 2013. Production of thermostable and organic solvent-tolerant alkaline protease from Bacillus coagulans PSB-07 under different submerged fermentation conditions. African journal of biotechnology. Vol. 12, No. 21, pp: 3341-3350.
18
Omidinia, E.; Mashayekhi Mazar, F.; Shahbaz Mohammadi, H.; Ebrahimi-Rad, M. and Gregorian, A., 2012. Isolation, purification and characterization of a thermophilic alkaline protease from Bacillus subtilis BP-36. Journal of Sciences. Vol. 23, No. 1, pp: 7-13.
19
Oskouie, S.F.G.; Tabandeh, F.; Yakhchali, B. and Eftekhar, F., 2007. Enhancement of alkalineprotease production by Bacillus clausii using Taguchi experimental design. African journal of biotechnology. Vol. 6, No. 22, pp: 2559-2564.
20
Pant, G.; Prakash, A.; Pavani, J.V.P.; Bera, S. and Deviram, G.V.N.S., 2015. Production, optimization and partial purification of protease from Bacillus subtilis. Journal of taibah university for science. Vol. 9, No. 1, pp: 50-55.
21
Schilling, O. and Overall, C.M., 2008. Proteome-derived, database-searchable peptide libraries for identifying protease cleavage sites. Nature biotechnology. Vol. 26, No. 6, pp: 685-694.
22
Sekhon, B.S., 2010. Food nanotechnology–an overview. Nanotechnology, science and applications. Vol. 3, No. 1, pp: 1-15.
23
Sharma, A. and Tiwari, R., 2005. Extracellular enzyme production by environmental strains of Serratia spp. isolated from river Narmada. Indian journal of biochemistry and biophysics. Vol. 42, No. 3, pp: 178-181.
24
Sizova, M.V.; Hohmann, T.; Hazen, A.; Paster, B.J.; Halem, S.R.; Murphy, C.M.; Panikov, N.S. and Epstein, S.S.; 2012. New Approaches for Isolation of Previously Uncultivated Oral Bacteria. Applied and environmental microbiology. Vol. 78, No. 1, pp: 194-203.
25
Sneath, P.H.A.; Sharpe, M.E. and Holt, J.G., 1984. Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology. First Ed. Vol. 2, The Williams & Wilkins Company, 428 E. Preston St, Baltimore, USA. pp: 1104-1139.
26
Starcher, B., 2001. A ninhydrin-based assay to quantitate the total protein content of tissue samples. Analytical biochemistry. Vol. 292, No. 1, pp: 125-129.
27
Suganthi, C.; Mageswari, A.; Karthikeyan, S.; Anbalagan,M.; Sivakumar, A. and Gothandam, K.M., 2013. Screening and optimization of protease production from a halotolerant Bacillus licheniformis isolated from saltern sediments. Journal of Genetic Engineering and Biotechnology. Vol. 11, No. 1, pp: 47-52.
28
Takenaka, S.; Yoshida, N.; Yoshida, K.; Murakami, S. and Aoki, K., 2011. Molecular cloning and sequence analysis of two distinct halotolerant extracellular proteases from Bacillus subtilisFP-133. Bioscience, biotechnology and biochemistry. Vol. 75, No. 1, pp: 148-151.
29
Vijayalakshmi, S.; Venkat Kumar, S. and Thankamani, V., 2011. Optimization and cultural characterization of Bacillus RV. B2. 90 producing alkalophilic thermophilic protease. Research Journal of Biotechnology. Vol. 6, pp: 26-32.
30
Yamane, K.; Bunai, K. and Kakeshita, H., 2004. Protein traffic for secretion and related machinery of Bacillus subtilis. Bioscience, biotechnology and biochemistry. Vol. 68, No. 10, pp: 2007 -2023.
31
Yildirim, V.; Baltaci, M.O.; Ozgencli, I.; Sisecioglu, M.; Adiguzel, A. and Adiguzel, G., 2017. Purification and biochemical characterization of a novel thermostable serine alkaline protease from Aeribacillus pallidus C10: a potential additive for detergents. J Enzyme Inhib Med Chem. Vol. 32, pp: 468-477.
32
ORIGINAL_ARTICLE
بهینه سازی تولید یک آنزیم پروتئازخارج سلولی قلیادوست مقاوم به حلال آلی ترشح شده از یک سویه باسیلوس
هدف در این پژوهش بهینه سازی تولید آنزیم پروتئاز قلیادوست مقاوم به حلال آلی از یک سویه باسیلوس و تعیین خصوصیات آنزیم می باشد. در این پژوهش یک سویه باسیلوس از چشمه آبگرم جداسازی شد و در محیط غنی شده با سیکلوهگزان (30%) و تولوئن (10%) رشد یافت. باکتریهای تولیدکننده پروتئاز با استفاده از کلنیهای رشد یافته روی پلیتهای اسکیم میلک آگار (SMA) جداسازی شدند. آنزیم پروتئاز در روش دو مرحلهای شامل رسوب دهی با سولفات آمونیوم و کروماتوگرافی تعویض آنیونی DEAE- سفارز به شکل جزیی تخلیص شد. در نهایت یکی از کلنیها به عنوان بهترین سویه با فعالیت پروتئازی معرفی شد. برای بهینه سازی محیط کشت باکتری برای تولید حداکثر پروتئاز فاکتورهای مختلف ازجمله زمان گرماگذاری، دما، اسیدیته، منابع کربن و منابع نیتروژن آزمایش شد. بیش ترین بازده رشد باکتریایی و تولید پروتئاز پس از 72 ساعت گرماگذاری در دمای37 درجه سانتی گراد و اسیدیته 7 زمانی که محیط کشت توسط منبع کربنی سوکروز و منبع نیتروژن عصاره مخمر 5 درصد غنی شده بود، مشاهده شد. این پروتئاز بیشترین فعالیت را در دمای 50 درجه سانتی گراد و اسیدیته 10 نشان داد و توسط اتیلن دی آمین تترا استیک اسید (EDTA) مهار شد، اما توسط مهارکنندههای سرین پروتئاز تحت تأثیر قرار نگرفت که پیشنهاد میکند این آنزیم یک متالوپروتئاز است. فعالیت آنزیم در حضور غلظت 10% (v/v)از تولوئن، متانول، اتانول و دیاتیلاتر افزایش یافت. بنابراین، آنزیم می تواند به عنوان یک بیوکاتالیست قوی در صنایع و بیوتکنولوژی به کار گرفته شود.
http://www.aejournal.ir/article_103656_d55890e2659cfc643c469b1fba64e8cb.pdf
2019-12-22
397
408
پروتئاز
باسیلوس
حلال آلی
تخلیص
شهره
محمدی
s.mohamadi@razi.ac.ir
1
گروه بیولوژی، دانشکده علوم، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران
AUTHOR
مریم
مهرابی
m.mehrabi@razi.ac.ir
2
گروه بیولوژی، دانشکده علوم، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران
LEAD_AUTHOR
Akel, H.; Al-Quadan, F. and Yousef, T.K., 2009. Characterization of a purified thermostable protease from hyperthermophilic Bacillus strain HUTBS71. Eur J Sci Res. Vol. 31, No. 2, pp: 280-288.
1
Badoei-Dalfard, A. and Karami, Z., 2013. Screening and isolation of an organic solvent tolerant-protease from Bacillus sp. JER02: activity optimization by response surface methodology. Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic. Vol. 89, pp: 15-23.
2
Beg, Q.K. and Gupta, R., 2003. Purification and characterization of an oxidation-stable, thiol-dependent serine alkaline protease from Bacillus mojavensis. Enzyme and Microbial Technology. Vol. 32, No. 2, pp: 294-304.
3
Deng, A.; Wu, J.; Zhang, Y.; Zhang, G. and Wen, T., 2010. Purification and characterization of a surfactant stable high-alkaline protease from Bacillus sp. B001. Bioresource technology. Vol. 101, No. 18, pp: 7100-7106.
4
El Hadj-Ali, N.; Agrebi, R.; Ghorbel-Frikha, B.; Sellami Kamoun, A.; Kanoun, S. and Nasri, M., 2007. Biochemical and molecular characterization of a detergent stable alkaline serine-protease from a newly isolated Bacillus licheniformis NH1. Enzyme and Microbial Technology. Vol. 40, No. 4, pp: 515-523.
5
Ghorbel-Frikha, B.; Sellami-Kamoun, A.; Fakhfakh, N.; Haddar, A.; Manni, L. and Nasri, M., 2005. Production and purification of a calcium-dependent protease from Bacillus cereus BG1. Journal of Industrial Microbiology and Biotechnology. Vol. 32, No. 5, pp: 186-194.
6
Gupta, R.; Beg, Q. and Lorenz, P., 2002. Bacterial alkaline proteases: molecular approaches and industrial applications. Applied microbiology and biotechnology. Vol. 59, No. 1, pp: 15-32.
7
Hawumba, J.F.; Theron, J. and Brözel, V.S., 2002. Thermophilic protease-producing Geobacillus from Buranga hot springs in Western Uganda. Current microbiology. Vol. 45, No. 2, pp: 144-150.
8
Hutadilok-Towatana, N.; Painupong, A. and Suntinanalert, P., 1999. Purification and characterization of an extracellular protease from alkaliphilic and thermophilic Bacillus sp. PS719. Journal of bioscience and bioengineering. Vol. 87, No. 5, pp: 581-587.
9
Jellouli, K.; Ghorbel-Bellaaj, O.; Ayed, H.B.; Manni, L.; Agrebi, R. and Nasri, M., 2011. Alkaline-protease from Bacillus licheniformis MP1: purification, characterization and potential application as a detergent additive and for shrimp waste deproteinization. Process Biochemistry. Vol. 46, No. 6, pp: 1248-1256.
10
Johnvesly, B. and Naik, G., 2001. Studies on production of thermostable alkaline protease from thermophilic and alkaliphilic Bacillus sp. JB-99 in a chemically defined medium. Process biochemistry. Vol. 37, No. 2, pp: 139-144.
11
Kalisz, H. and Fisher, A., 1988. Microbial Proteinases, Advances in Biochemical Engineering Biotechnology.
12
Kaur, S.; Vohra, R.; Kapoor, M.; Beg, Q.K. and Hoondal, G., 2001. Enhanced production and characterization of a highly thermostable alkaline protease from Bacillus sp. P-2. World Journal of Microbiology and Biotechnology. Vol. 17, No. 2, pp: 125-129.
13
Kumar, C.G.; Joo, H.S.; Koo, Y.M.; Paik, S.R. and Chang, C.S., 2004. Thermostable alkaline protease from a novel marine haloalkalophilic Bacillus clausii isolate. World Journal of Microbiology and Biotechnology. Vol. 20, No. 4, pp: 351-357.
14
Kumar, C.G. and Takagi, H., 1999. Microbial alkaline proteases: from a bioindustrial viewpoint. Biotechnology advances. Vol. 17, No. 7, pp: 561-594.
15
Lowry, O.H.; Rosebrough, N.J.; Farr, A.L. and Randall, R.J., 1951. Protein measurement with the Folin phenol reagent. Journal of biological chemistry. Vol. 193, pp: 265-275.
16
Lutz, G.; Chavarría, M.; Arias, M.L. and Mata-Segreda, J.F., 2006. Microbial degradation of palm (Elaeis guineensis) biodiesel. Revista de biología tropical. Vol. 54, No. 1, pp: 59-63.
17
Matta, H. and Punj, V., 1998. Isolation and partial characterization of a thermostable extracellular protease of Bacillus polymyxa B-17. International journal of food microbiology. Vol. 42, No.3, pp: 139-145.
18
Maurer, K.H., 2004. Detergent proteases. Current opinion in Biotechnology. Vol.15, No.4, pp: 330-334.
19
Naidu, K.S.B. and Devi, K.L., 2005. Optimization of thermostable alkaline protease production from species of Bacillus using rice bran. African Journal of Biotechnology. Vol.4, No.7, pp: 724-726.
20
Padmapriya, B.; Rajeswari, T.; Nandita, R. and Raj, F., 2012. Production and purification of alkaline serine protease from marine Bacillus species and its application in detergent industry. European Journal of Applied Sciences. Vol.4, No.1, pp: 21-26.
21
Patel, R.; Dodia, M. and Singh, S.P., 2005. Extracellular alkaline protease from a newly isolated haloalkaliphilic Bacillus sp.: Production and optimization. Process Biochemistry. Vol. 40, No. 11, pp: 3569-3575.
22
Sawant, R. and Nagendran, S., 2014. Protease: an enzyme with multiple industrial applications. World J Pharm Sci. Vol. 3, pp: 568-579.
23
Shah, K.; Mody, K.; Keshri, J. and Jha, B., 2010. Purification and characterization of a solvent, detergent and oxidizing agent tolerant protease from Bacillus cereus isolated from the Gulf of Khambhat. Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic. Vol. 67, No. 1-2, pp: 85-91.
24
Sierecka, J.K., 1998. Purification and partial characterization of a neutral protease from a virulent strain of Bacillus cereus. The international journal of biochemistry & cell biology. Vol. 30, No. 5, pp: 579-595.
25
Siezen, R.J. and Leunissen, J.A., 1997. Subtilases: the superfamily of subtilisin‐like serine proteases. Protein science. Vol. 6, No. 3, pp: 501-523.
26
Valasaki, K.; Staikou, A.; Theodorou, L.G.; Charamopoulou, V.; Zacharaki, P. and Papamichael, E.M., 2008. Purification and kinetics of two novel thermophilic extracellular proteases from Lactobacillus helveticus, from kefir with possible biotechnological interest. Bioresource technology. Vol. 99, No. 13, pp: 5804-5813.
27
Venugopal, M. and Saramma, A., 2007. An alkaline protease from Bacillus circulans BM15, newly isolated from a mangrove station: characterization and application in laundry detergent formulations. Indian journal of microbiology. Vol. 47, No. 4, 298 p.
28
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی خصوصات ژنوتیپی آنزیم هیستامیناز گیاه خلر (Lathyrus sativus) در راستای اهداف درمانی و تشخیصی
هیستامین یک آمین زیستی است که در بیماریهای مختلف مانند رینیت آلرژیک، التهاب ملتحمه، کهیر و درماتیت آتوپیک و هم چنین در ایجاد بیماریهای آنافیلاکسی قلبی و آسمهای آلرژیک نقش دارد. گیاهان دارویی از دیر باز در درمان بیماریهای مختلف استفاده شده اند. به دلیل کاربردهای وسیع آنزیم هیستامیناز در درمان بیماری های با منشا هیستامین در انسان و دام، در این مطالعه شناسایی و همسان سازی ژن آنزیم هیستامیناز (DAO) از گیاه خُلر (Lathyrus sativus) بومی صورت گرفت. به این منظور استخراج mRNA از جوانه خلر بومی استان فارس و به دنبال آن سنتز cDNA به منظور تکثیر ژن هیستامیناز با پرایمرهای طراحی شده انجام شد، سپس همسان سازی ژن پس از برش آنزیمی در ژن و وکتور pQE-80L انجام گردید، در نهایت انتقال وکتور نوترکیب به باکتری Escherichia coli سویه XL1-Blue صورت گرفت. صحت کلونینگ نیز با هضم آنزیمی و توالی یابی تایید شد. پس از توالی یابی نوکلئوتیدی، ترادف mRNA ژن مربوط به طول 1995جفت باز در بانک ژن امریکا به شماره دسترسی KR063661 ثبت گردید، توالی پروتئینی آن نیز در بانک ژن به شماره ALE71304 ثبت شد. ارزیابی ساختار سه بعدی آنزیم هیستامیناز بومی و مطالعه فیلوژنتیک آن نیز براساس ترادفهای شناخته شده در این مطالعه انجام گرفت که نشان دهنده بیش ترین شباهت ژنتیکی (94 %) و پروتئینی (% 96) به گونه نخود (Pisium sativum) است. پلاسمید نوترکیب تولید شده در آینده می تواند در سیستمهای بیانی استفاده شود و منجر به تولید انبوه آنزیم برای استفاده از خصوصیات درمانی این آنزیم منحصر به فرد گردد.
http://www.aejournal.ir/article_104129_1d4d7be166e89c1f0d49285764fb4277.pdf
2019-12-22
409
418
آنزیم هیستامیناز
رینیت
دی آمین اکسیداز
کلونینگ
PQE-80L
وحیده
تقدسی
v.taghadosi@gmail.com
1
بخش پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
حسن
شریفی یزدی
hassansharifyi@gmail.com
2
بخش علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
LEAD_AUTHOR
حمیدرضا
کربلائی حیدری
karbalaei769@gmail.com
3
بخش زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
Alirezaei, M.; Delfan, B.; Dezfoulian, O.; Kheradmand, A.; Divekan, H.; Rashidipour, M. and Khonsari, A., 2014. The plant histaminase: a promising enzyme with antioxidant properties versus histamine release in isoprenaline-induced myocardial infarction in rats. Journal of physiology and biochemistry. Vol. 70, No. 3, pp: 837-847.
1
Alonso-Lomillo, M.A.; Domínguez-Renedo, O.; Matos, P. and Arcos-Martínez, M.J., 2010. Disposable biosensors for determination of biogenic amines. Analytica chimica acta. Vol. 665, No. 1, pp: 26-31.
2
Bachrach, U., 2018. Copper amine oxidases and amines as regulators of cellular processes. in Structure and Functions of Amine Oxidases; CRC Press. pp: 19-34.
3
Biji, K.; Ravishankar, C.; Venkateswarlu, R.; Mohan, C. and Gopal, T.S., 2016. Biogenic amines in seafood: a review. Journal of food science and technology. Vol. 53, No. 5, pp: 2210-2218.
4
Brazeau, B.J.; Johnson, B.J. and Wilmot, C.M., 2004. Copper-containing amine oxidases. Biogenesis and catalysis; a structural perspective. Archives of biochemistry and biophysics. Vol. 428, No. 1, pp: 22-31.
5
Çakmaz, R.; Büyükaşık, O.; Kahramansoy, N.; Erkol, H.; Çöl, C.; Boran, Ç. and Buğdaycı, G., 2013. A combination of plasma DAO and citrulline levels as a potential marker for acute mesenteric ischemia. Libyan Journal of Medicine. Vol. 8, No. 1, pp: 20596.
6
Chand, G. and Singh, P., 2016. Possible retrieval of organochorine induced renal toxicity in fish by aqueous root extract of withania somnifera. International Journal of Pharmaceutical Sciences and Research. Vol. 7, pp: 6.
7
Federico, R.; Cona, A.; Caliceti, P. and Veronese, F.M., 2006. Histaminase PEGylation: preparation and characterization of a new bioconjugate for therapeutic application. Journal of controlled release. Vol. 115, No. 2, pp: 168-174.
8
Koyanagi, T.; Matsumura, K.; Kurda, S.i. and Tanizawa, K., 2000. Molecular cloning and heterologous expression of pea seedling copper amine oxidase. Bioscience, biotechnology, and biochemistry. Vol. 64, No. 4, pp: 717-722.
9
Kumar, V.; Dooley, D.M.; Freeman, H.C.; Guss, J.M.; Harvey, I.; McGuirl, M.A.; Wilce, M.C. and Zubak, V.M., 1996. Crystal structure of a eukaryotic (pea seedling) copper-containing amine oxidase at 2.2 A resolution. Structure. Vol. 4, No. 8, pp: 943-55.
10
Kung, H.F.; Tsai, Y.H.; Chang, S.C. and Hong, T.Y., 2012. Biogenic amine content, histamine-forming bacteria, and adulteration of pork in tuna sausage products. Journal of food protection. Vol. 75, No. 10, pp: 1814-1822.
11
Kusche, J.; Stahlknecht, C.-D.; Lorenz, W.; Reichert, G. and Richter, H., 1977. Diamine oxidase activity and histamine release in dogs following acute mesenteric artery occlusion. Agents and actions. Vol. 7, No. 1, pp: 81-84.
12
Maintz, L.; Schwarzer, V.; Bieber, T.; van der Ven, K. and Novak, N., 2008. Effects of histamine and diamine oxidase activities on pregnancy: a critical review. Human reproduction update. Vol. 14, No. 5, pp: 485-495.
13
Manzotti, G.; Breda, D.; Di Gioacchino, M. and Burastero, S., 2016. Serum diamine oxidase activity in patients with histamine intolerance. International journal of immunopathology and pharmacology. Vol. 29, No. 1, pp: 105-111.
14
Masini, E.; Vannacci, A.; Marzocca, C.; Mannaioni, P.F.; Befani, O.; Federico, R.; Toma, A. and Mondovı, B., 2002. A plant histaminase modulates cardiac anaphylactic response in guinea pig. Biochemical and biophysical research communications. Vol. 296, No. 4, pp: 840-846.
15
Masini, E.; Pierpaoli, S.; Marzocca, C.; Mannaioni, P.F.; Pietrangeli, P.; Mateescu, M.A.; Zelli, M.; Federico, R. and Mondovı̀, B., 2003. Protective effects of a plant histaminase in myocardial ischaemia and reperfusion injury in vivo. Biochemical and biophysical research communications. Vol. 309, No. 2, pp: 432-439.
16
Masini, E.; Vannacci, A.; Giannini, L.; Befani, O.; Nistri, S.; Mateescu, M.A.; Mannaioni, P.F.; Mondovì, B. and Federico, R., 2004. Effect of a plant histaminase on asthmalike reaction induced by inhaled antigen in sensitized guinea pig. European journal of pharmacology. Vol. 502,
17
No. 3, pp: 253-264.
18
Masini, E.; Bani, D.; Marzocca, C.; Mateescu, M.A.; Mannaioni, P.F.; Federico, R. and Mondovì, B., 2007. Pea seedling histaminase as a novel therapeutic approach to anaphylactic and inflammatory disorders. The Scientific World Journal. Vol. 7, pp: 888-902.
19
Petersen, J.; Raithel, M. and Schwelberger, H., 2002. Histamine N-methyltransferase and diamine oxidase gene polymorphisms in patients with inflammatory and neoplastic intestinal diseases. Inflammation Research. Vol. 51, pp: S91-S92.
20
Pini, A.; Veglia, E. and Rosa, A.C., 2017. Histamine and the Kidney: In Vivo Animal Models; in Histamine Receptors as Drug Targets. Springer. pp: 309-352.
21
Rosini, E.; Nossa, S.; Valentino, M.; D’Arrigo, P.; Marinesco, S. and Pollegioni, L., 2012. Expression of rat diamine oxidase in escherichia coli. Journal of Molecular Catalysis. Vol. 82, pp: 115-120.
22
Rosini, E.; Tonin, F.; Vasylieva, N.; Marinesco, S. and Pollegioni, L., 2014. Evolution of histamine oxidase activity for biotechnological applications. Applied microbiology and biotechnology. Vol. 98, No. 2, pp: 739-748.
23
Schwelberger, H.G.; Feurle, J. and Ahrens, F., 2013. Characterization of diamine oxidase from human seminal plasma. Journal of Neural Transmission. Vol. 120, No. 6, pp: 983-986.
24
Sun, J.; Morita, H.; Chen, G.; Noguchi, H. and Abe, I., 2012. Molecular cloning and characterization of copper amine oxidase from huperzia serrata. Bioorganic and Medicinal Chemistry Letters. Vol. 22, pp: 5784-5790.
25
Tanizawa, K.; Matsunami, H. and Yamaguchi, H., 2000. Mechanism of Topa Quinone Biogenesis in Copper Amine Oxidase Studied by Site-Directed Mutagenesis and X-Ray Crystallography. in Biochemistry and Molecular Biology of Vitamin B6 and PQQ-dependent Proteins. Springer. pp: 67-70.
26
Wimmerova, M. and Macholan, L., 1999. Sensitive amperometric biosensor for the determination of biogenic and synthetic amines using pea seedlings amine oxidase: a novel approach for enzyme immobilisation. Biosensors and Bioelectronics. Vol. 14, pp: 695-702.
27
Wolvekamp, M.C. and de Bruin, R.W., 1994. Diamine oxidase: an overview of historical, biochemical and functional aspects. Digestive Disease Journal. Vol. 12, No. 1, pp: 2-14.
28
ORIGINAL_ARTICLE
تولید ماست میوه ای پروبیوتیک حاوی پالپ توت فرنگی از شیر میش
در این پژوهش تاثیر افزایش پالپ توت فرنگی در طول نگه داری بر رشد لاکتوباسیلوس کازئی، خواص فیزیکوشیمیایی، حسی و آنتی اکسیدانی ماست توت فرنگی مورد بررسی قرار گرفت. مقدار پالپ توت فرنگی به میزان (صفر، 1 ، 2، 3 و 4 درصد) و زمان نگه داری در محدوده 22-1 روز و دمای نگه داری 4 درجه سانتی گراد بود. نتایج حاصل نشان داد با افزایش مقدار پالپ توت فرنگی و گذشت زمان تعداد کلنی لاکتوباسیلوس کازئی کاهش یافت. نوع تیمار و زمان نگه داری و اثر متقابل آن ها بر زنده مانی باکتری لاکتوباسیلوس کازئی در ماست میوه ای پروبیوتیک معنی دار بود (0/05>p). اثر نوع تیمار و زمان نگه داری و اثر توام زمان و نوع نمونه بر روی تغییرات pH ماست میوه ای پروبیوتیک معنی دار بود (0/05>p) و با گذشت زمان pH کاهش یافت. اثر نوع تیمار و زمان نگه داری و اثر توام زمان و نوع نمونه بر روی تغییرات اسیدیته، ماده خشک و خصوصیات آنتی اکسیدانی ماست میوه ای پروبیوتیک معنی دار بود (0/05>p). به موازات pH، درصد اسیدیته نمونه ها افزایش یافت. درصد چربی نمونه ها تا روز دوازدهم نگه داری افزایش و تا پایان مدت ماندگاری ثابت باقی ماند. نوع تیمار اثر معنی داری بر درصد چربی ماست میوه ای پروبیوتیک داشت (0/05>p) و زمان و اثر متقابل تیمار و زمان نگه داری اثر معنی داری بر درصد چربی ماست پروبیوتیک میوه ای نداشت (0/05<p). درصد پروتئین تمامی تیمارها تا پایان دوره نگه داری بدون تغییر باقی ماند. اثر نوع تیمار، زمان نگه داری و اثر متقابل تیمار و زمان نگه داری بر پذیرش کلی، احساس دهانی، طعم و رنگ معنی دار نبود (0/05<p). اثر زمان بر امتیاز حسی آب اندازی ماست حاوی درصدهای متفاوت پالپ توت فرنگی کاملاً معنی دار بود (0/05>p). ولی اثر نوع تیمار، اثر متقابل تیمار و زمان نگه داری بر آب اندازی ماست معنی دار نبود (0/05<p).
http://www.aejournal.ir/article_104164_4cf04280aa11616323f389356a46b35f.pdf
2019-12-22
419
428
ماست پروبیوتیک
پالپ توت فرنگی
لاکتوباسیلوس کازئی
مریم
صاحب خانی
sahebkhanims@gmail.com
1
گروه علوم و صنایع غذایی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین -پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
علیرضا
شهاب لواسانی
shahabam20@yahoo.com
2
مرکز تحقیقات فناوری های نوین تولید غذای سالم ، واحد ورامین-پیشوا ، دانشگاه آزاد اسلامی ، ورامین ، ایران
LEAD_AUTHOR
سارا
موحد
phd_movahed23@yahoo.com
3
گروه علوم و صنایع غذایی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین -پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
سازمان ملی استاندارد ایران. a1371. روش تولید ماست پروبیوتیک. استاندارد شماره 11325.
1
سازمان ملی استاندارد ایران. b1371 .تعیین خصوصیات فیزیکوشیمیایی pH در شیر و فراورده های آن. استاندارد شماره 2852.
2
سازمان ملی استاندارد ایران. c1371. انداره گیری چربی در شیر و فراورده های آن. استاندارد شماره 695.
3
سازمان ملی استاندارد ایران. d1371. اندازه گیری اسیدیته در شیر و فراورده های آن. استاندارد شماره 2852.
4
سازمان ملی استاندارد ایران. e1371. اندازه گیری ماده خشک در شیر و فروارده های آن. استاندارد شماره 695.
5
سازمان ملی استاندارد ایران. f 1371. اندازه گیری پروتئین در شیر و فروارده های آن. استاندارد شماره 695.
6
دیبازر، پ.؛ خسروشاهی اصل، ا. و زمردی، ش.، 1394. تاثیر افزایش فیبر انگور و کتوزان بر برخی از ویژگی های ماست میوه ای پروبیوتیک حاوی لاکتوباسیلوس فرمنتوم در طول نگه داری. نشریه پژوهش های صنایع غذایی. جلد 25، شماره 4، صفحات 639 تا 653.
7
علیرضالو، ک.؛حصاری، ج.؛ صادقی، م.ح. و رضایی، ا.، 1394. بررسی ویژگی های کیفی و ماندگاری ماست رنگی فراسودمند غنی شده با عصاره های چغندر قند، اسفناج و گوجه فرنگی. نشریه پژوهش های صنایع غذایی. شماره 2، جلد 25، صفحات 283 تا 297.
8
واحدی، ن.؛ مظاهری تهرانی، م. و شهیدی، ف.، 1388. فرمولاسیون ماست میوه تهیه شده از شیر تغلیظ شده و بررسی کیفیت آن در طی زمان نگه داری. مجله علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی. جلد 13، شماره 48، صفحات 251 تا 260.
9
Aryana, K.J. and McGrew, P., 2007. Quality attributes of yogurt with lactobacillus casei and various prebiotics. Swiss Society of Food Science and Technology. Vol. 40, pp: 1808-1808.
10
Azarnia, S.; Robert, N. and Lee, B., 2006. Biotechnological methods to accelerate Cheddar cheese ripening. Critical Reveiw Biotechnology. Vol. 26, pp: 121- 143.
11
Bueno, L.; Silva, T.M.S.; Perina, N.; Bogsan, C. and Oliveira, M., 2014. Addition of strawberry, raspberry and “pitanga” pulps improves the physical properties of symbiotic yoghurts. Chemical Engineering Transactions. Vol. 38, pp: 499-504.
12
Duda-Chodak, A.; Tarko, T. and Statek, M., 2008. The Effect of Antioxidants on Lactobacillus Casei Cultures. Acta Sci. Pol., Technol. Aliment. Vol. 7, No. 4, pp: 39-51.
13
Gunenc, A.; Fang, S. and Hosseinian, F., 2015. Raspberry and Strawberry Addition Improves Probiotic Viability in Yogurt and Possess Antioxidant Activity. Journal of Food Research. Vol. 4, No. 4, pp: 47- 58.
14
Haddad, M.A., 2017. Viability of Probiotic Bacteria during Refrigerated Storage of Commercial Probiotic Fermented dairy products marketed in Jordan. Journal of Food Research. Vol. 6, No. 2, pp: 75-81.
15
Hussain, I.; Rahman, A.U. and Atkinson, A., 2009. Quality Comparison of Probiotic and Natural Yogurt. Pakistan Journal of Nutrition. Vol. 8, pp: 9-12.
16
Lasik, A.; Pikul, J.; Danków, R. and Cais-Sokolińska, D., 2011. The Fermentation Dynamics of Sheep Milk with Increased Production of Whey Proteins. Poznań University of Life SciencesActa Sci. Pol., Technol. Aliment. Vol. 10, No. 2, pp: 155-163.
17
Majchrzak, D.; Lahm, B. and DÜrrschmid, K., 2010. Conventional dnd Probiotic Yogurts Differ in Sensory Properties but not in consumers' preferences. Journal of Sensory Studies. Vol. 25, pp: 431-446. doi: 10.1111/j.1745-459X.2009.00269.x.
18
Sultana, K.; Godward, G. and Reynolds, N., 2000. Encapsulation of probiotic bacteria with alginatestarchand evaluation of survival in simulated gastrointestinal conditions and in yoghurt. Vol. 62, pp: 47-55.
19
Supriyanti, F.M.T.; Zackiyah, N. and Azizah, N., 2017. Effect of Fruit Lemon Juice Addition to The Content of Protein, Fat, Lactose & Probiotic on Soy Yogurt. J of Physics: Conf, Series. 812. doi:10.1088/17426596/812/1/012024.
20
Yilmaz-Ersan, L. and Kurdal, E., 2014. The Production of Set-Type-Bio-Yoghurt with Commercial Probiotic. Culture International Journal of Chemical Engineering and Applications. Vol. 5, No. 5, pp: 402- 408.
21
Zainoldin, K.H. and Baba, A.S., 2009. The effect of Hylocereus polyrhizus and Hylocereus undatus on physicochemical, proteolysis, and antioxidant activity in yogurt. World Academy of Science, Engineering and Technology. Vol. 76, pp: 361-336.
22