ORIGINAL_ARTICLE
کمی سازی توزیع و روند تغییرات آشیان اکولوژیک خرس قهوهای (1758 Ursus arctos Linnaeus) در استان ایلام
آشیان اکولوژیک محدودهای از یک یا چند عامل محیطی است که رشد، تکثیر و بقای یک موجود زنده در آن امکانپذیر است. در این مطالعه به منظور مدل سازی پراکنش و کمی سازی آشیان اکولوژیک خرس در استان ایلام از روش آنتروپی بیشینه (MaxEnt) استفاده شد. برای انتخاب نقاط پس زمینه از بایاس شبکه به روش تابع چگالی کرنل استفاده شد. 70 درصد نقاط برای آموزش و 30 درصد نیز برای آزمون مورد استفاده قرار گرفتند. نتایج نشان داد مدل در اجرای خود موفق بوده (0/97=AUC) و در تمام حد آستانهها با مدل تصادفی تفاوت معنی داری دارد (0/05>P). به منظور تعیین روند تغییرات آشیان اکولوژیک گونه در محدوده پراکنش حد آستانه 50 درصدی (0/5) بر روی نقشه مطلوبیت زیستگاه اعمال شد و از خروجی این نقشه برای تعیین محدوده شبکه بندی استفاده شد. انتخاب شبکه با توجه به گستره خانگی انجام گرفت. به ازای هر شبکه نقشه مطلوبیت برش خورد و برای تعیین پهنای آشیان اکولوژیک وارد نرم افزار ENMtools شد. از آزمون ناپارامتری من-کندال برای تعیین روند تغییرات پهنای آشیان اکولوژیک استفاده شد. نتایج نشان داد که متغیرهای ارتفاع، تراکم پوشش گیاهی و فاصله از جنگل های نیمه متراکم بیش ترین تأثیر را در پراکنش گونه داشته است و خرس در منطقه مانشت و قلارنگ بیش ترین پهنای آشیان اکولوژیک دارد. روند تغییرات آشیان اکولوژیک نشان داد که پهنای آشیان اکولوژیک گونه ازشمال غرب استان به سمت جنوب شرق، به صورت معنی داری دارای روند کاهشی است.
http://www.aejournal.ir/article_104300_7432cc08ae91c126898399f36fd7dc42.pdf
2020-03-20
1
8
10.22034/aej.2020.104300
خرس قهوه ای
استان ایلام
مدل سازی توزیع
نقاط شبه عدم حضور
پهنای آشیان اکولوژیک
حسین
محسنی نژاد
mmohseni866@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
AUTHOR
پیمان
کرمی
peymankarami1988@gmail.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
LEAD_AUTHOR
احمدی، ک.؛ علوی، س.ج. و طبری کوچکسرایی، م.، 1394. ارزیابی توان تولید رویشگاه راش شرقی (Fagus orientalis L.) با استفاده از مدل جمعی تعمیم یافته (مطالعه موردی: جنگل آموزشی پژوهشی دانشگاه تربیت مدرس). مجله جنگل ایران. انجمن جنگلبانی ایران. سال 7، شماره 1، صفحات 17 تا 32.
1
اشرف زاده، م. ر.؛ کابلی، م.؛ نقوی، م.ر.؛ حقی، ح.؛ شکیبا، م.؛ ربیعی، ک.؛ غنی پور، د. و انصاری، م.، 1394. بررسی ساختار جغرافیایی و تاریخچه جمعیت شناختی خرس قهوه ای براساس توالی ناحیه کنترل میتوکندری. فصلنامه تاکسونومیک و بیوسیستماتیک. سال 7، شماره 25، صفحات 25 تا 38.
2
حیدری، ح.؛ مرادی، ه. و طالبی، ر.، 1397. بررسی و مقایسه عناصر اقلیمی مؤثر بر بیماری های تنفسی در مناطق کوهستانی و دشت (مطالعه موردی: استان ایلام). فصلنامه مخاطرات طبیعی. دوره 7، شماره 15، صفحات 125 تا 140.
3
عبیداوی، ز.؛ رنگزن، ک.؛ میرزائی، ر. و کابلی، م.، 1395. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه خرس قهوه ای در منطقه حفاظت شده شیمبارو، استان خوزستان. فصلنامه اکولوژی کاربردی. جلد 5، شماره 17، صفحات 61 تا 72.
4
غلامحسینی، ق.؛ اسماعیلی، ح.ر.؛ آهنی، ح.؛ تیموری، آ.؛ ابراهیمی، م.؛ کمی، ح.ق. و ظهرابی، ح.، 1389. بررسی عوامل توپوگرافیک و اقلیمی بر پراکنش خرس قهوه ای Ursus arctos در استان فارس با استفاده از سامانه اطلاعات جغرافیایی. فصلنامه زیست شناسی ایران. جلد 23، شماره 2، صفحات 215 تا 233.
5
فلاحتی، س.، 1397. بررسی وضعیت زیستگاه خرس قهوه ای (Ursus arctos) از منظر سیمای سرزمین در منطقه حفاظت شده قلاجه. پایان نامه کارشناسی ارشد محیط زیست. دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست. دانشگاه ملایر. 144 صفحه.
6
کرمی، پ. و شایسته، ک.، 1397. بررسی آشیان بوم شناختی قوچ و میش در مناطق حفاظت شده لشگردر-گلپرآباد، الوند-چال خاتون راسوند و پلنگاب. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 10، شماره 4، صفحات 65 تا 74.
7
کریمی، ح. و فتحی زاد، ح.، 1392. بررسی تغییرات منطقه ای بارش سالانه با کاربرد روشهای زمینآمار (مطالعه موردی: استان ایلام). نشریه علمی پژوهشی جغرافیا و برنامه ریزی. سال 19، شماره 53، صفحات 277 تا 297.
8
کوچالی، ف.؛ نظامی بلوچی، ب.؛ گشتاسب، ح. و رایگانی، ب.، 1397. شناسایی زیستگاه های کلیدی برای حفاظت از خرس قهوه ای (Ursus Arctos) در دامنه شمالی البرز. فصلنامه زیست شناسی جانوری تجربی. سال 10، شماره 3، صفحات 1 تا 8.
9
محمدیان، ع. و طهماسبی، پ.، 1395. شکست تصادفی آشیان اکولوژیک گونههای گیاهی مراتع در اثر چرای حیوانات (مطالعه موردی: شهرستان بروجن، استان چهارمحال بختیاری). مجله مهندسی اکوسیستم بیابان. سال 5، شماره 10، صفحات 23 تا 32.
10
مدرسی، ف.؛ عراقی نژاد، ش.؛ ابراهیمی، ک. و خلقی، م.، 1389. بررسی منطقهای تغییر اقلیمی با استفاده از آزمون آماری مطالعه موردی: حوضه آبریز گرگانرود- قره سو. نشریه آب و خاک. جلد 24، شماره 2، صفحات 476 تا 489.
11
نظامی بلوچی، ب.، 1393. بررسی عادتهای غذایی فصلی خرس قهوه ای سوری در منطقه حفاظت شده البرز مرکزی. تاکسونومی و بیوسیستماتیک. سال 6، شماره 9، صفحات 27 تا 36.
12
یالپانیان، س.؛ نظری زاده دهکردی، م.؛ اسدی، ع.؛ امیدی، م.؛ رضائی، ع. و کابلی، م.، 1397. بررسی آشیان بوم شناختی اقلیمی کمرکولی جنگلی در رشته کوههای البرز و زاگرس. فصلنامه محیط زیست طبیعی. دوره 71، شماره 2، صفحات 269 تا 285.
13
Ambarlı, H.; Ertürk, A. and Soyumert, A., 2016. Current status, distribution, and conservation of brown bear and wild canids (gray wolf, golden jackal, and red fox; Canidae) in Turkey. Turkish J of Zoology. Vol. 40. No. 6, pp: 944-956.
14
Bojarska, K. and Selva, N., 2012. Spatial patterns in brown bear diet: the role of geographical and environmental factors. Mammal review. Vol. 42, pp: 120-143.
15
Elith, J.; Phillips, S.J.; Hastie, T.; Dudík, M.; Chee, Y.E. and Yates, C.J., 2011. A statistical explanation of MaxEnt for ecologists. Diversity and distributions. Vol. 17, pp: 43-57.
16
Frąckowiak, W.; Theuerkauf, J.; Pirga, B. and Gula, R., 2014. Brown bear habitat selection in relation to anthropogenic structures in the Bieszczady Mountains, Poland. Biologia. Vol. 69, No. 7, pp: 926-930.
17
Guillera‐Arroita, G.; Lahoz‐Monfort, J.J.; Elith, J.; Gordon, A.; Kujala, H.; Lentini, P.E.; McCarthy, M.A.; Tingley, R. and Wintle, B.A., 2015. Is my species distribution model fit for purpose? Matching data and models to applications. Global Ecology and Biogeography. Vol. 24, No. 3, pp: 276-292.
18
Jerina, K.; Jonozovič, M.; Krofel, M. and Skrbinšek, T., 2013. Range and local population densities of brown bear Ursus arctos in Slovenia. European Journal of Wildlife Research. Vol. 59, No. 4, pp: 459-467.
19
Katajisto, J. and Moilanen, A., 2006. Kernel-based home range method for data with irregular sampling intervals. Ecological Modelling. Vol. 194, No. 4, pp: 405-413.
20
Kramer‐Schadt, S.; Niedballa, J.; Pilgrim, J.D.; Schröder, B.; Lindenborn, J.; Reinfelder, V.; Stillfried, M.; Heckmann, I.; Scharf, A.K.; Augeri, D.M. and Cheyne, S.M., 2013. The importance of correcting for sampling bias in MaxEnt species distribution models. Diversity and Distributions. Vol. 19, No. 11, pp: 1366-1379.
21
Martin, J.; Revilla, E.; Quenette, P.Y.; Naves, J.; Allaine, D. and Swenson, J.E., 2012. Brown bear habitat suitability in the Pyrenees: transferability across sites and linking scales to make the most of scarce data. Journal of Applied Ecology. Vol. 49, No. 3, pp: 621-631.
22
Mateo Sanchez, M.C.; Cushman, S.A. and Saura, S., 2014. Scale dependence in habitat selection: the case of the endangered brown bear in the Cantabrian Range. Inter J of Geograph Inform scie. Vol. 28, No. 8, pp: 1531-1546.
23
May, R.; Van Dijk, J.; Wabakken, P.; Swenson, J.E.; Linnell, J.D.; Zimmermann, B.; Odden, J.; Pedersen, H.C.; Andersen, R. and Landa, A., 2008. Habitat differentiation within the large‐carnivore community of Norway's multiple‐use landscapes. Journal of Applied Ecology. Vol. 45, No. 5, pp: 1382-1391.
24
McCune, B. and Keon, D., 2002. Equations for potential annual direct incident radiation and heat load. Journal of vegetation science. Vol. 13, No. 4, pp: 603-606.
25
Mcloughlin, P.D. and Ferguson, S.H., 2000. A hierarchical pattern of limiting factors helps explain variation in home range size. Ecoscience. Vol. 7, No. 2, pp: 123-130.
26
Pacifici, M.; Foden, W.B.; Visconti, P.; Watson, J.E.; Butchart, S.H.; Kovacs, K.M.; Scheffers, B.R.; Hole, D.G.; Martin, T.G.; Akcakaya, H.R. and Corlett, R.T., 2015. Assessing species vulnerability to climate change. Nature climate change. Vol. 5, No. 3, p: 215.
27
Partal, T. and Kahya, E., 2005. Trend analysis in Turkish precipitation data. Hydrological processes. Vol. 20, No. 9, pp: 2011-2026.
28
Peers, M.J.; Wehtje, M.; Thornton, D.H. and Murray, D.L., 2014. Prey switching as a means of enhancing persistence in predators at the trailing southern edge. Global change biology. Vol. 20, No. 4, pp: 1126-1135.
29
Phillips, S.J.; Dudík, M.; Elith, J.; Graham, C.H.; Lehmann, A.; Leathwick, J. and Ferrier, S., 2009. Sample selection bias and presence‐only distribution models: implications for background and pseudo‐absence data. Ecological applications. Vol. 19, No. 1, pp: 181-197.
30
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological modelling. Vol. 190, No. 3-4, pp: 231-259.
31
Posillico, M.; Meriggi, A.; Pagnin, E.; Lovari, S. and Russo, L., 2004. A habitat model for brown bear conservation and land use planning in the central Apennines. Biological Conservation. Vol. 118, No. 2, pp: 141-150.
32
Preatoni, D.; Mustoni, A.; Martinoli, A.; Carlini, E.; Chiarenzi, B.; Chiozzini, S.; Van Dongen, S.; Wauters, L.A. and Tosi, G., 2005. Conservation of brown bear in the Alps: space use and settlement behavior of reintroduced bears. Acta oecologica. Vol. 28, No. 3, pp: 189-197.
33
Radosavljevic, A. and Anderson, R.P., 2014. Making better Maxent models of species distributions: complexity, overfitting and evaluation. Journal of biogeography. Vol. 41, No. 4, pp: 629-643.
34
Ripple, W.J.; Estes, J.A.; Beschta, R.L.; Wilmers, C.C.; Ritchie, E.G.; Hebblewhite, M.; Berger, J.; Elmhagen, B.; Letnic, M.; Nelson, M.P. and Schmitz, O.J., 2014. Status and ecological effects of the world’s largest carnivores. Science. Vol. 343, No. 6167, p: 1241484.
35
Roellig, M.; Dorresteijn, I.; von Wehrden, H.; Hartel, T. and Fischer, J., 2014. Brown bear activity in traditional wood-pastures in Southern Transylvania, Romania. Ursus. Vol. 25, No. 1, pp: 43-53.
36
Salmi, T.; Määttä, A.; Anttila, P.; Ruoho-Airola, T. and Amnell, T., 2002. Detecting Trends of Annual Values of Atmospheric Pollutants by the Mann-Kendall Test and Sen’s Slope Estimates The Excel Template Application Makesens. Finnish Meteorological Institute, Air Quality Research, Helsinki, Finland. 37 p.
37
Su, J.; Aryal, A.; Hegab, I.M.; Shrestha, U.B.; Coogan, S.C.; Sathyakumar, S.; Dalannast, M.; Dou, Z.; Suo, Y.; Dabu, X. and Fu, H., 2018. Decreasing brown bear habitat due to climate change in Central Asia and the Asian Highlands. Ecology and Evolution. Vol. 8, pp: 11887-11899.
38
Süel, H., 2019. Brown Bear (Ursus Arctos) Habitat Suitability Modelling and Mapping. Applied Ecology and Environmental Research. Vol. 17, No. 2, pp: 4245-4255.
39
Swenson, J.E., 2000. Action plan for the conservation of the brown bear in Europe (Ursus arctos). Nature and environment. Council of Europe. pp: 18-114.
40
Turgay P. and Ercan, K., 2005. Trend analysis in Turkish precipitation data. Journal of Hydrological processes. Vol. 20, pp: 2011-2026.
41
Vorsino A. E.; King C.B.; Haines W.P. and Rubinoff, D., 2013. Modeling the Habitat Retreat of the Rediscovered Endemic Hawaiian Moth Omiodes continuatalis Wallengren (Lepidoptera: Crambidae). PLoS ONE8. Vol. 1, p: e51885. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0051885.
42
Ziółkowska, E.; Ostapowicz, K.; Radeloff, V.C.; Kuemmerle, T.; Sergiel, A.; Zwijacz-Kozica, T. and Selva, N., 2016. Assessing differences in connectivity based on habitat versus movement models for brown bears in the Carpathians. Landscape Ecology. Vol. 31, pp: 1863-1882.
43
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی پتانسیل مناطق خشک و نیمه خشک در حفظ زیستگاههای مطلوب سمداران کوهزی تحت تاثیر تغییر اقلیم آینده: مطالعه موردی قوچ وحشی (Ovis sp) و بز وحشی (Capra aegagrus)
تهدیدات انسانی در طول چندین دهه اخیر تاثیرات منفی زیادی بر جمعیت های سم داران ایران داشته است. این در حالی است که تغییر اقلیم نیز می تواند به واسطه تغییر شرایط زیستگاهی کنونی این گونهها به طور مضاعف میزان آسیب پذیری آن ها را افزایش دهد. در این مطالعه، تاثیر تغییر اقلیم بر زیستگاه های مطلوب دو سم دار آسیب پذیر قوچ وحشی (Ovis sp) و بز وحشی (Capra aegagrus) و هم چنین میزان جا به جایی پراکنش کنونی آن ها در امتداد گرادیان ارتفاع و عرض جغرافیایی در مناطق مرکزی ایران بررسی گردید. پیش بینی های آینده با استفاده از رویکرد مدل سازی تجمعی و داده های اقلیمی تهیه شده توسط پنج مدل گردش عمومی جو براساس سناریو 8.5 PCR انجام گرفت. جا به جایی پراکنش گونه ها در واکنش به تغییر اقلیم نیز با محاسبه اختلاف میانگین ارتفاع و اختلاف فاصله جغرافیایی میان مراکز ثقل پراکنش کنونی و آینده کمی گردید. نتایج به دست آمده نشان داد که تغییر اقلیم آینده به ترتیب سبب کاهش بیش از 68% و 75% زیستگاه های مطلوب قوچ وحشی و بز وحشی خواهد شد که بیش تر زیستگاه های واقع در مناطق کم ارتفاع بخش جنوب (خراسان جنوبی، یزد و فارس) و مرکز (شرق اصفهان) منطقه مطالعه را شامل می شود. در نتیجه تغییر اقلیم هم چنین بخش اندکی از زیستگاه های نامطلوب کنونی برای دو گونه در آینده مطلوب خواهد شد که طبق پیش بینی ها گسترش آن ها محدود به شمال منطقه (استان سمنان) می باشد. نتایج ارزیابی ها هم چنین نشان داد که پراکنش کنونی قوچ وحشی و بز وحشی به ترتیب به میزان و 150 متر در امتداد گرادیان ارتفاع و 167 و 124 کیلومتر در امتداد عرض جغرافیایی جا به جا خواهد شد.
http://www.aejournal.ir/article_104371_2bca89ae6fd459bf03f4ededf3fff1a5.pdf
2020-03-20
9
16
10.22034/aej.2020.104371
سمداران آسیبپذیر
تغییر اقلیم
مدل سازی پراکنش گونهای
ناهمگنی ارتفاعی
عرض جغرافیایی
مناطق حفاظت شده
شیما
ملکوتی خواه
s.malakouti@na.iut.ac.ir
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
LEAD_AUTHOR
سیما
فاخران
fakheran@cc.iut.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
محمود رضا
همامی
mrhemami@cc.iut.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
جوزف
سن
josef.senn@wsl.ch
4
موسسه تحقیقات فدرال جنگل، برف و منظر، زوریخ، سوییس
AUTHOR
حیدریان آقاخانی، م.؛ تمرتاش، ر.؛ جعفریان، ز.؛ ترکش اصفهانی، م. و طاطیان، م.ر.، 1396. پیشبینی اثرات تغییر اقلیم بر پراکنش بالقوه گونه بادامک با استفاده از مدل سازی3 اجماعی در زاگرس مرکزی. مجله سنجش از دور و سامانه اطلاعات جغرافیایی در منابع طبیعی. سال 8، شماره 3، صفحات 1 تا 14.
1
رضوانی، ا.؛ فاخران، س. و سفیانیان، ع.، ۱۳۹۶. مدل سازی پراکنش جغرافیایی قوچ و میش وحشی در مواجهه با تغییرات اقلیمی. نخستین همایش بین المللی سامانه اطلاعات جغرافیایی جاده ابریشم، دانشگاه صنعتی اصفهان.
2
رنجبر، ن.؛ همامی، م.ر.؛ ترکش، م. و شاهقلیان، ج.، 1395. ارزیابی فصلی مطلوبیت زیستگاه بز وحشی در مناطق کوهستانی پارک ملی کلاه قاضی با روش حداکثر آنتروپی. مجله بوم شناسی کاربردی. سال5، شماره 16، صفحات 69 تا 82.
3
ماهینی، ع.ا.، 1373. ارزیابی زیستگاه حیات وحش در ذخیره گاه زیست کره توران. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی پردیس کرج، دانشگاه تهران. 252 صفحه.
4
Angert, A.L.; Crozier, L.G.; Rissler, L.J.; Gilman, S.E.; Tewksbury, J.J. and Chunco, A.J., 2011. Do species’ traits predict recent shifts at expanding range edges? Ecology Letters. Vol. 14, No. 7, pp: 677-689.
5
Aryal, A.; Brunton, D.; Ji, W.; Karmacharya, D.; McCarthy, T.; Bencini, R. and Raubenheimer, D., 2014. Multipronged strategy including genetic analysis for assessing conservation options for the snow leopard in the central Himalaya. J of Mamma. Vol. 95, No. 4, p: 871-881.
6
Bashari, H. and Hemami, M.R., 2013. A predictive diagnostic model for wild sheep habitat suitability in Iran. J for Nature Conservation. Vol. 21, No. 5, pp: 319-325.
7
Brambilla, M.;Pedrini, P.; Rolando, A.and Chamberlain, D. E., 2016. Climate change will increase the potential conflict between skiing and high-elevation bird species in the Alps. J of Biogeogra. Vol. 43, pp: 2299-2309.
8
Büntgen, U.; Greuter, L.; Bollmann, K.; Jenny, H.; Liebhold, A.; Galván, J.D.; Stenseth, N.C.; Andrew, C. and Mysterud, A., 2017. Elevational range shifts in four mountain ungulate species from the Swiss Alps. Ecosphere. Vol. 8, No. 4.
9
Cardillo, M.; Mace, G.M.; Jones, K.E.; Bielby, J.; Bininda-Emonds, O.R.P.; Sechrest, W.; Orme, C.D.L. and Purvis, A., 2005. Multiple causes of high extinction risk in large mammal species. Science. Vol. 309, No. 5738, pp: 309-1241.
10
Chen, I.C.; Hill, J.K.; Ohlemüller, R.; Roy, D.B. and Thomas, C.D., 2011. Rapid range shifts of species associated with high levels of climate warming. Science. Vol. 333, No. 6045, pp:1024-1026.
11
Epps, C.W.; McCullough, D.R.; Wehausen, J.D.; Bleich, V.C. and Rechel, J.L., 2004. Effects of climate change on population persistence of desert‐dwelling mountain sheep in California. Conservation Biology. Vol. 18, pp:102-113.
12
Fuller, A.; Mitchell, D.; Maloney, S.K. and Hetem, R., 2016.Towards a mechanistic understanding of the responses of large terrestrial mammals to heat and aridity associated with climate change. Climate Change Responses. Vol. 3, No. 10, pp: 10.
13
Gross, J.E.; Kneeland, M.C.; Reed, D.F. and Reich, R.M., 2002. GIS-based habitat models for mountain goats. Journal of Mammalogy. Vol. 83, No. 1, pp: 218-228.
14
Huete, A.R.A., 1988. soil-adjusted vegetation index (SAVI). Remote Sens. Environ. Vol. 25, No.3, pp: 295-309.
15
Hsu, J.S.; Powell, J. and Adler, P.B., 2012. Sensitivity of mean annual primary production to precipitation. Global Change Biology. Vol. 18, No. 7, pp: 2246-2255.
16
IPCC. 2013. Working Group, I Contribution to the IPCC Fifth Assessment Report, Climate Change 2013: The Physical Science Basis. IPCC, AR5, 2014.
17
Kafash, A.; Kaboli, M.; Koehler, G.; Yousefi, M. and Asadi, A., 2015. Ensemble distribution modeling of the Mesopotamian spiny-tailed lizard, Saara loricata in Iran: an insight into the impact of climate change. Turkish Journal of Zoology. Vol. 40, No. 2, pp: 262-271.
18
Khosravi, R.; Hemami, M.R.; Malekian, M.; Flint, A. and Flint, L., 2016. Maxent modeling for predicting potential distribution of goitered gazelle in central Iran: the effect of extent and grain size on performance of the model. Turkish Journal of Zoology. Vol. 40, No. 4, pp: 574-585.
19
Khosravi, R.; Hemami, M.R. and Cushman, S.A., 2018. Multispecies assessment of core areas and connectivity of desert carnivores in central Iran. Diversity and Distributions. Vol. 24, No. 2, pp: 193-207.
20
Lamsal, P.; Kumar, L.; Aryal, A. and Atreya, K., 2018. Future climate and habitat distribution of Himalayan Musk Deer. Ecological Informatics. Vol. 44, pp: 101-108.
21
La-Sorte, F.A. and Jetz, W., 2010. Projected range contractions of montane biodiversity under global warming. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. Vol. 277, No. 1699, pp: 3401-3410.
22
Liow, L.H.F.; Ortelius, M.; Lintulaakso, K.; Mannila, H. and Stenseth, N.C., 2009. Lower extinction risk in sleep orhide mammals. American Naturalist. Vol. 173, No. 2, pp: 264-272.
23
Luo, Z.; Jiang, Z. and Tang, S., 2015. Impacts of climate change on distributions and diversity of ungulates on the Tibetan Plateau. Ecological Applications. Vol. 25, No. 1, pp: 24-38.
24
Moses, M.R.; Frey, J.K. and Roemer, G.W., 2012. Elevated surface temperature depresses survival of banner-tailed kangaroo rats: will climate change cook a desert icon? Oecologia. Vol. 168, No. 1, pp: 257-268.
25
Sappington, J.M.; Longshore, K.M. and Thompson, D.B., 2007. Quantifying landscape ruggedness for animal habitat analysis: a case study using bighorn sheep in the Mojave Desert. Wildlife management. Vol. 71, No. 5, pp: 1419-1426.
26
Sarhangzadeh, J.; Yavari, A.R.; Hemami, M.R.; Jafari, H.R. and Shams-Esfandabad, B., 2013. Habitat suitability modeling for wild goat (Capra aegagrus) in a mountainous arid area, central Iran. Caspian Journal of Environmental Sciences. Vol. 11, No. 1, pp: 41-51.
27
Schloss, C.A.; Nunez, T.A. and Lawler, J., 2012. Dispersal will limit ability of mammals to track climate change in the Western Hemisphere. Proceedings of the national academy of sciences. Vol. 109, No. 22, pp: 8606-8611.
28
Segurado, P.; Araujo, M.B. and Kunin, W.E., 2006. Consequences of spatial autocorrelation for niche based models. J of Applied Ecology. Vol. 43, No. 3, pp: 433-444.
29
Somero, G.N., 2010. The physiology of climate change: how potentials for acclimatization and genetic adaptation will determine winners and losers. Journal of Experimental Biology. Vol. 213, No. 6, pp: 912-920.
30
St-Louis, A. and Côté, S. D., 2014. Resource selection in a high-altitude rangeland equid, the kiang (Equus kiang): influence of forage abundance and quality at multiple spatial scales. Canadian J of Zoology. Vol. 92, No. 3, pp:239-249.
31
Tamburello, N.; Côté, I.M. and Dulvy, N.K., 2015. Energy and the scaling of animal space use. American Naturalist. Vol. 186, No. 2, pp: 196-211.
32
Thuiller, W.; Lafourcade, B.; Engler, R. and Araújo, M.B., 2009. BIOMOD, a platform for ensemble forecasting of species distributions. Ecography. Vol. 32, pp: 369-373.
33
Yousefi, M.; Ahmadi, M.; Nourani, E.; Behrooz, R.; Rajabizadeh, M.; Geniez, P. and Kaboli, M., 2015. Upward altitudinal shifts in habitat suitability of mountain vipers since the last glacial maximum. PloS one. Vol. 10, No. 9, p: e0138087.
34
White, K.S.; Gregovich, D.P. and Levi, T., 2018. Projecting the future of an alpine ungulate under climate change scenarios. Global change biology. Vol. 24, No. 3, pp: 1136-1149.
35
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه وضعیت دو فصل بهار و تابستان در تولید پوشش گیاهی مورد تغذیه گوزن زرد ایرانی (Cervus dama mesopotamica) در جزیره اشک، پارک ملی دریاچه ارومیه
در این پژوهش به منظور اندازه گیری میزان بهره برداری از گیاهان مورد تغذیه گوزن زرد ایرانی در جزیره اشک با وسعت 2900 هکتار در فصول بهار و تابستان بعد از شناسایی گونه های دارای ارجحیت با استفاده از روش قطع و توزین به اندازه گیری میزان تولید در دو فصل پرداخته شد و به فرایند مقایسه بین دو فصل با توجه به میزان بارندگی (متغیر مستقل) و تولید گونه های مورد تغذیه گوزن زرد ایرانی (متغیر وابسته) مورد بررسی قرار گرفت. این اختلاف را می توان از دید پوشش گیاهی موجود در جزیره و زیستگاه های مختلف و هم چنین حجم تولیدی گونه های گیاهی دارای ارجحیت در دو فصل بهار و تابستان ارائه نمود. تولید بهاره گونه های دارای ارجحیت غذایی که گوزن زرد ترجیح می دهد (حاوی شش نوع مختلف) در چهار نوع زیستگاه (دشتی، شیب دار و سنگلاخی، حاشیه چشمه و دامنه شرقی و دامنه شمالی) 47062/04±284531/24 کیلوگرم برآورد شد. درحالی که میزان تولید تابستانه در مورد گونه های دارای ارجحیت شامل 7 نوع ماده غذایی 35992/57±241367/58 کیلوگرم برآورد شد. برداشت بهاره در شرایطی انجام شد که رشد گونه های گیاهی به دلیل سرد بودن هوا در این فصل اندک بود. از نظر آماری فرض 0H (تولید گونه های دارای ارجحیت در دو فصل بهار و تابستان با یکدیگر تفاوت دارند) پذیرفته می شود. اما در عین حال این اختلاف در تولید اندک بوده است که این امر می تواند به این دلیل باشد که اولاً در فصل بهار در استان آذربایجان غربی و به خصوص جزیره اشک فصل رویش با تأخیر آغاز می شود (به دلیل سرد بودن بیش ازحد هوا) و لذا با توجه به برداشت بهاره که در اردیبهشت ماه صورت گرفته است احتمالاً رشد گونه های گیاهی زیاد نبوده و لذا تولید بهاره و تابستانه اختلاف اندکی داشته اند.
http://www.aejournal.ir/article_104170_d91ef0c0d94835cde22cf85f10d812ab.pdf
2020-03-20
17
22
10.22034/aej.2020.104170
گوزن زرد ایرانی
جزیره اشک
تغذیه
پوشش گیاهی
محمدحسن
حسین زاده
rabbour1366@yahoo.com
1
گروه تنوع زیستی و زیستگاه ها، دانشکده محیط زیست و انرژی، واحدعلوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
علی اصغر
زارعی
aazarei65@gmail.com
2
گروه تنوع زیستی و زیستگاه ها، دانشکده محیط زیست و انرژی، واحدعلوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
مازیار
محمودی
m.mahmoudi@srbiau.ac.ir
3
گروه تنوع زیستی و زیستگاه ها، دانشکده محیط زیست و انرژی، واحدعلوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد
بندعلی
mohammad.bandali@gmail.com
4
گروه تنوع زیستی و زیستگاه ها، دانشکده محیط زیست و انرژی، واحدعلوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
اردکانی، م.، 1387. اکولوژی. انتشارات دانشگاه تهران. 340صفحه.
1
درویش صفت، ع.ا.، 1385. اطلس مناطق حفاظت شده ایران. طرح، معاونت محیط زیست وتنوع زیستی سازمان حفاظت محیط زیست. ناشر دانشگاه تهران. تهران. 168صفحه.
2
حسین زاده راوری، م.، 1391. تعیین ظرفیت برد تغذیه ای گوزن زرد ایرانی در جزیره اشک، دریاچه ارومیه. پایان نامه کارشناسی ارشد رشته محیط زیست. دانشکده محیط زیست و انرژی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران. 121 صفحه.
3
زهزاد، ب.، 1368. بررسی فلور و پوشش گیاهی جزیره اشک (پارک ملی دریاچه ارومیه). مجله علوم دانشگاه تهران. جلد 18، صفحات 1 تا 4.
4
عجمی، ح.، 1381. برآورد ظرفیت برد تغذیه ای زیستگاه آهو در پارک ملی کلاه قاضی. پایان نامه کارشناسی ارشد محیط زیست. دانشکده منابع طبیعی. دانشگاه تهران. 126 صفحه.
5
مجنونیان، ه. و مولوی، م.، 1364. مقدمه ای بر گوزن زرد ایرانی. مجله محیط شناسی. سال 12، شماره 13، 101 تا 132.
6
Beck, J.L.; Peek J.M. and Strand, E.K., 2006. Estimates of Elk Summer Range Nutritional Carrying Capacity Constrained by Probabilities of Habitat Selection. The J of Wildlife Management. Vol. 70, No. 1, pp: 283-294.
7
Cowan, I.M.T. and Holloway, C.W., 1973. Threatened Deer of the World: Conservation Status. Biological Conservation. Vol. 5, No. 4, pp: 243-250.
8
Fulbright, T.E. and Ortega, A.S., 2006. White Tailed Deer Habitat, Ecology and Management on Rangelands. Texas A&M University Press.
9
Guisan, A.; Niklaus, E. and Zimmermann, B., 2000. Predictive habitat distribution models in ecology. Ecol. Vol. 135, pp: 147-186.
10
http://www.iucnredlist.org/apps/redlist/details/6232.
11
Jenkins, D.A.; Schaefer, J.A.; Rosatte, R.; Bellhouse, T.; Hamr, J. and Mallory, F.F., 2007. Winter resource selection of reintroduced elk and sympatric white-tailed at multiple spatial scales. J of Mammalogy. Vol. 88, No. 3, pp: 614-624.
12
Luoto, M.;Virkkala, R.; Heikkinen, R.K. and Rainio, K., 2004. Predicting bird species richness using remote sensing in boreal agricultural-forest mosaics. Ecological Applications. Vol. 14, pp: 1946-1962.
13
Lupardus, J.L.; Muller, L.I. and Kindall, J.L., 2011. Seasonal forage availability and diet for reintroduced Elk in the Cumberland Mountains, Tennessee. Southeastern Naturalist. Vol. 10, No. 1, pp: 53-74.
14
Manly, B.F.J.; McDonald, L.L.; Thomas, D.L.; McDonald T.L. and Erickson, W.P., 2002. Resource selection by animals: statistical analysis and design for field studies (second edition). Kluwer Press, Boston, USA.
15
Murray, L., 2010. Biostatistical design and analysis using R: a practical guide. A practical Guide. Wiley- Blackwell.
16
Nugent, G. 1990. Forage availability and the diet of Fallow Deer (Dama dama) in the Blue Mountains, Otago. Newzealand Journal of Ecology. Vol. 13, pp: 83-95.
17
Sinclair, A.R.E.; Fryxell, J.M. and Caughley, G., 2006. Wildlife Ecology, Conservation and Management. 2nd Edi. Blackwell.
18
White, K.S.; Pendleton, G.W. and Hood, E., 2009. Effects of snow on Sitka black-tailed deer browse availability and nutritional carrying capacity in Southeastern Alaska. Journal of Wildlife Management. Vol. 73, No. 4, pp: 481-487.
19
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی مطلوبیت زیستگاه و مسیرهای ارتباطی آهوی ایرانی در غرب استان کرمانشاه و شرق کشور عراق (مطالعه موردی: منطقه شکارممنوع قراویز)
ارتباط یک ویژگی مهم سیمای سرزمین است که در صورت نابودی، تنوع زیستی در معرض خطر جدی قرار میگیرد. آهوی ایرانی (Gazella subgutturosa subgutturosa) از گونههای شاخص دشت های ایران است که در منطقه شکار ممنوع قراویز در غرب استان کرمانشاه پراکنش دارد. به دلیل آسیب پذیربودن زیستگاههای این گونه، تهدیدات متعددی پتانسیل تأثیرگذاری را بر روی این گونه دارند. درنتیجه حفظ زیستگاه های مطلوب و راه های ارتباطی بین این زیستگاه ها ضروری است. هدف این مطالعه شناسایی مسیرهای ارتباطی گونه در منطقه شکار ممنوع قراویز با بخشهای غربی محدوده پراکنش گونه در کشور عراق است. ابتدا مطلوبیت زیستگاه گونه با استفاده از مدل مکسنت تهیه شد. سپس نتایج مدل به مرزی که محدوده گدار بین ایران و عراق را شـامل می شـود تعمیم داده شد. به منظور مدل سازی، از نقاط حضور گونه و 9 متغیر زیستگاهی استفاده شد. با اعمال حد آستانه بر روی نقشه مطلوبیت زیستگاه، بلوکهای زیستگاهی شناسایی شدند. از معکوس نقشه مطلوبیت به عنوان نقشه هزینه جا به جایی استفاده شد. مدل سازی دالان با استفاده از روش تحلیل کم ترین هزینه، بین بلوک های زیستگاهی صورت گرفت. نتایج نشان داد که متغیرهای فاصله از جاده، ارتفاع و شیب بر روی گونه، بیش ترین تأثیر را داشته اند. براساس متریک های تراکم و مطلوبیت سیمای سرزمین، بالاترین ارزش حفاظتی برای جا به جایی بین لکههای زیستگاهی، مربوط به دالان های غربی منطقه قراویز در مجاورت با کشور عراق است.
http://www.aejournal.ir/article_104570_0f5c9af9f975bc9ce3ff6063c6bd5494.pdf
2020-03-20
23
30
10.22034/aej.2020.104570
آهوی ایرانی
قراویز
عراق
دالان
تحلیل کم ترین هزینه
مینا
اسماعیلی
minaesmaeili1990@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
AUTHOR
کامران
شایسته
ka_shayesteh@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
LEAD_AUTHOR
پیمان
کرمی
peymankarami1988@gmail.com
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، ا.؛ احمدزاده، ف. و نعیمی، ب.، 1397. مناطق داغ زیستگاهی خانواده گربه سانان تحت اقلیم کنونی در ایران. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 10، شماره 4، صفحات 1 تا 12.
1
اکبری هارونی، ح.؛ بهروزی راد، ب. و حسنزاده کیابی، ب.، 1387. بررسی رضامندی زیستگاه آهو در منطقه حفاظت شده کالمند- بهادران استان یزد. مجله محیط شناسی. دوره 34، شماره 46، صفحات 113 تا 118.
2
الماسیه، ک.؛ کابلی، م.؛ رسولی، ف.؛ قدیریان، ط.؛ فهیمی، ه. و آبتین، ا.، 1396. شناسایی بلوک ها وکریدورهای زیستگاهی خرس سیاه ایرانی (Ursus thibetanus gedrosianus) در استان هرمزگان. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال9، شماره 1، صفحات 28 تا 31.
3
امامی، م.؛ میرکریمی، س. و سلمان ماهینی، ع.، 1397. مسیریابی بهینه خطوط لوله گاز طبیعی به کمک روش LCPA، منطقه مورد مطالعه: ذهنه زاو استان گلستان. مجله جغرافیایی آمایش فضا. سال 8، شماره 27، صفحات 77 تا 100.
4
امیری، س.، 1395. تعیین زیستگاه های ارتباطی بالقوه گونه سنجاب ایرانی (Sciurus anomalus; Gmelin, 1778) در حدفاصل جنگل های بلوط حومه شهرستان مریوان و شهر سروآباد در استان کردستان. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه کردستان. 101 صفحه.
5
انصاری، ا.، 1394. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه درنای معمولی (Grus grus) در تالاب میقان اراک. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. دوره 7، شماره 24، صفحات 57 تا 70.
6
آقانجفی، ش. و سالاری، ل.، 1396. بررسی انتخاب زیستگاه بهاره آهوی کوهی (Gazella gazella) در جزیره فارور، خلیج فارس. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 3، صفحات 35 تا 40.
7
پیری صحراگرد، ح.؛ زارع چاهوکی، م. و آذرنیوند،ح.، 1395. کاربرد روش آنتروپی حداکثر در مدل سازی پیشبینی پراکنش رویشگاه های گیاهی (مطالعه موردی: مراتع بخش خلجستان استان قم). فصلنامه مرتع و آبخیزداری، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 69، شماره 4، صفحات 819 تا 834.
8
ثنایی، ف.؛ ماهینی، ع.؛ میرکریمی، س.ح. و وارسته مرادی، ح.، 1391. بررسی اکولوژی کریدور و تکه تکه شدن زیستگاه. اولین همایش ملی جغرافیا، مخاطرات محیطی و توسعه پایدار. اهواز. دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. 7 صفحه.
9
جاپلقی، م.؛ غلامعلی فرد، م. و شایسته، ک.، 1396. پایش و تحلیل الگوی سیمای سرزمین استان لرستان و فرآیند تغییر آن در محیط GIS. محیط زیست طبیعی. دوره 70، شماره 1، صفحات 15 تا 36.
10
جعفری، ع.؛ میرزائی، ر.؛ زمانی، ر. و محمودی، ا.، 1394. مدل سازی پراکنش قوچ و میش اصفهان در منطقه حفاظت شده تنگ صیاد براساس بهبود اریب داده های حضور و انتخاب متغیرهای مناسب با استفاده از روش آنتروپی حداکثر. فصلنامه بوم شناسی کاربردی. سال 5، شماره 15، صفحات 39 تا 48.
11
حسینی، گ.؛ شمس اسفندآباد، ش. و علیزاده شعبانی، ا.، 1395. ارزیابی مطلوبیت زیستگاه آهوی ایرانی (Gazella subgutturosa subgutturosa) در منطقه حفاظت شده هفتادقله استان مرکزی. محیط زیست طبیعی. دوره 69، شماره 4، صفحات 965 تا 979.
12
خسروی، ر.؛ همامی، م.ر. و ملکیان. م.، 1396. ارزیابی پیوستگی سیمای سرزمین و کریدورهای مهاجرتی آهوی گواتردار (Gazella subgutturosa) در مناطق مرکزی ایران. بوم شناسی کاریردی. دوره 6، شماره 4، صفحات 49 تا 64.
13
رادنژاد، ه.؛ مشتاقی، م.؛ عموئیان، ا. و جمالی منش، ا.، 1395. مدل سازی توزیع پراکنش آهوی گواتردار (Gazella subgutturosa) در پارک ملی بمو با روش حداکثر آنتروپی MAXENT. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 8، شماره 2، صفحات 17 تا 24.
14
رازقندی، ع.؛ زبردست، ل.؛ جعفری، ح.ر. و یاوری، ا.ر.، 1397. کمی سازی تغییرات زیستگاهی آهوی ایرانی (Gazella subgutturosa subgutturosa) در پناهگاه حیات وحش شیراحمد سبزوار با استفاده از متریکهای اکولوژی سیمای سرزمین. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 10، شماره 3، صفحات 9 تا 16.
15
رنجبر، ن. و شاهقلیان، ج.، 1392. روش های ارزیابی مطلوبیت زیستگاه. نخستین کنفرانس بین المللی اکولوژی سیمای سرزمین. اصفهان. دانشگاه صنعتی اصفهان. 6 صفحه.
16
زارع چاهوکی، م. و عباسی، م.، 1395. تعیین رویشگاه بالقوه گونه گیاهی ارمک یا Ephedra strobilacea L. با استفاده از مدل آنتروپی حداکثر در مراتع پشتکوه استان یزد. نشریه حفاظت از زیست بوم گیاهان. دوره 4، شماره 9، صفحات 195 تا 212.
17
شبانی، ا.؛ حبیب زاده، ن. و حسینی قمی، م.م.، 1396. تعیین اولویت کریدورهای حیات وحش بین مناطق حفاظت شده استان آذربایجان شرقی. جغرافیا و پایداری محیط. دوره 7، شماره 23، صفحات 67 تا 82.
18
طرح مدیریت و حفاظت از آهوی ایرانی. 1389. سازمان حفاظت محیط زیست. بخش پستانداران. 13 صفحه.
19
عبداللهی، ص. و ایلدرمی، ع.ر.، 1396. ارزیابی چیدمان مکانی سیمای سرزمین به منظور دستیابی به اقدامات حفاظتی. فصلنامه محیط زیست و توسعه پایدار. دوره 8، شماره 16، صفحات 5 تا 18.
20
عسگری، ا.؛ خوشبخت، ک.؛ صوفی زاده، س. و کامبوزیا، ج.، 1393. ارزیابی تنوع گیاهان کشاورزی و تأثیرگذاری فاکتورهای مدیریتی در منطقه شکار ممنوع قراویز. بوم شناسی کشاورزی. جلد 6، شماره 4، صفحات 812 تا 822.
21
قاسمی خادمی، ت.، 1392. آهوهای ایران. اولین همایش سراسری کشاورزی و منابع طبیعی پایدار. تهران. موسسه آموزش عالی مهر اروند. 11 صفحه.
22
کاظمی جهندیزی، ا.؛ کابلی، م.؛ کرمی، م. و صوفی، م.، 1394. تعیین ظرفیت برد زیستگاه و رژیم غذایی آهوی ایرانی (Gazella subgutturosa subgutturosa) در پارک ملی سرخه حصار تهران. فصلنامه علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 17، شماره 1، صفحات 135 تا 143.
23
کرمی، پ.، 1393. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه آهوی ایرانی (Gazella subgutturosa subgutturosa) در منطقه شکار ممنوع قراویز با استفاده از تجزیه و تحلیل آشیان اکولوژیک (ENFA). پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه هرمزگان. 125 صفحه.
24
کرمی، پ.؛ اسماعیل پور، ی.؛ قاسمی، ص. و شریفی، م.، 1394. تعیین عرصه های مستعد احداث آبشخور برای آهوی ایرانی (Gazella subgutturosa subgutturosa) با استفاده از تحلیل سلسله مراتبی (مطالعه موردی: منطقه شکار ممنوع قراویز). فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 7، شماره 3، صفحات 1 تا 12.
25
کرمی، پ.؛ کمانگر، م. و حسینی، س.م.، 1395. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه آهوی ایرانی (Gazella subgutturos subgutturosa) در منطقه شکار ممنوع قراویز و استان کرمانشاه با استفاده از شبکه عصبی مصنوعی. مجله پژوهش های جانوری. دوره 29، شماره 3، صفحات 340 تا 352.
26
مددی، م.؛ اکبرنژاد، ف. و قربان زاده، س.، 1397. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه آهو (Gazella subgutturosa) در پارک ملی گلستان. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 10، شماره 1، صفحات 9 تا 18.
27
مشهدی احمدی، ا.ع.؛ شمس اسفندآباد، ب. و گشتاسب میگونی، ح.، 1393. مدل سازی مسیرهای گدار گوسفند وحشی البرز مرکزی (O.o.arkali & O.o.vigneii) با استفاده از آنالیز کم ترین هزینه مسیر در استان تهران. فصلنامه علوم و مهندسی محیط زیست. دوره 1، شماره 3، صفحات 41 تا 58.
28
مکی، ت.؛ فاخران، س.؛ مرادی، ح.؛ ایروانی، م. و فرهمند، م.، 1391. ارزیابی اثرات بوم شناختی کنارگذر غرب اصفهان بر پناهگاه حیات وحش قمیشلو با استفاده از روش HEP. فصلنامه بوم شناسی کاربردی. دوره 1، شماره 2، صفحات 39 تا 52.
29
Bagli, S.; Geneletti, D. and Orsi, F., 2011. Routeing of power lines through least-cost path analysis and multicriteria evaluation to minimise environmental impacts. Environmental Impact Assessment Review. Vol. 31, No. 3, pp: 234-239.
30
Baldwin, R., 2009. Use of maximum entropy modeling in wildlife research. Entropy. Vol. 11, No. 4, pp: 854-866.
31
Chetkiewicz, C.L.B. and Boyce, M.S., 2009. Use of resource selection functions to identify conservation corridors. Journal of Applied Ecology. Vol. 46, No. 5, pp: 1036-1047.
32
Cushman, S.A. and Wasserman, T.N., 2018. Landscape Applications of Machine Learning: Comparing Random Forests and Logistic Regression in Multi-Scale Optimized Predictive Modeling of American Marten Occurrence in Northern Idaho, USA. In Machine Learning for Ecology and Sustainable Natural Resource Management. Springer, Cham. pp: 185-203.
33
Fabrizio, M.; Di Febbraro, M.; D’Amico, M.; Frate, L.; Roscioni, F. and Loy, A., 2019. Habitat suitability vs landscape connectivity determining roadkill risk at a regional scale: a case study on European badger (Meles meles). European Journal of Wildlife Research. Vol. 65, No. 1, 7 p.
34
Kaminsin, D. and Suttidate, N., 2019. Identifying potential dispersal corridors for Malayan tapirs (Tapirus indicus) in southern Thailand. Walailak Procedia.Vol. 2019, No. 3, 145 p.
35
Majumdar, K.; Adhikari, D.; Datta, B.K. and Barik, S.K., 2019. Identifying corridors for landscape connectivity using species distribution modeling of Hydnocarpus kurzii (King) Warb. a threatened species of the Indo-Burma Biodiversity Hotspot. Landscape and ecological engineering. Vol. 15, No. 1, pp: 13-23.
36
Sawyer, S.C.; Epps, C.W. and Brashares, J.S., 2011. Placing linkages among fragmented habitats: do least‐cost models reflect how animals use landscapes? Journal of Applied Ecology. Vol. 48, No. 3, pp: 668-678.
37
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی نقش آموزش محیط زیست در جوامع محلی برکاهش تعارض انسان و حیات وحش
از آنجایی که قوانین مربوط به مدیریت مناطق حفاظت شده بر اساس اهداف حفاظتی تعیین گردیده لذا باعث محدویت دسترسی به منابع طبیعی توسط روستاییان و عشایر شده است. اقدامات حفاظتی جمعیت گونه های وحشی را افزایش داده که در نتیجه آن زمین های کشاورزی و دام های اهلی بیش تر در معرض خطر آسیب قرار می گیرند. جوامع روستایی و عشایر از دیرباز به صورت مستقیم نیازمند استفاده از این منابع برای تامین معیشت خود هستند، این قوانین در صورتی که اقتصاد و معیشت جوامع محلی را نادیده گرفته و صرفاً بر حفاظت متمرکز باشد، باعث ایجاد نگرش منفی نسبت به قوانین و گرایش به قانون گریزی در جوامع محلی شده و پیامد آن افزایش تعارض بین انسان و حیات وحش خواهد بود. در این پژوهش از دو روش آمار توصیفی و استنباطی جهت تجزیه و تحلیل داده ها استفاده گردید. تحلیل همبستگی نشان می دهد که بین متغیرهای مستقل عوامل اقتصادی-اجتماعی ساکنان بومی، مدیریت حیات وحش، عوامل تهدید کننده اکوسیستم و حیات وحش، رفتار زیست محیطی ساکنان بومی، میزان آگاهی و اطلاع از منطقه حفاظت شده و منابع کسب اطلاعات در زمینه حفاظت با متغیر وابسته آموزش محیط زیست برای کاهش چالش انسان و حیات وحش رابطه مستقیم و معنی داری در سطح وجود دارد. هم چنین بیش تر مطالعات فقط به بررسی جنبه های فنی کاهش تضاد انسان و حیات وحش می پردازد و آموزش زیست محیطی نادیده گرفته می شود. بنابراین برای رفع این مشکل نیاز به یک برنامه جامع بلندمدت است که بتواند جنبه های اجتماعی، فرهنگی و حفاظتی را تحت پوشش قرار دهد.
http://www.aejournal.ir/article_104708_993e4b2169488a7f6237473cc1a67196.pdf
2020-03-20
31
40
10.22034/aej.2020.104708
تعارض انسان و حیات وحش
آموزش محیط زیست
جوامع محلی
نوید
زمانی
naviduok@gmail.com
1
گروه آموزش محیط زیست، دانشگاه پیام نور، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
جواد
حاتمی
j.hatami@modares.ac.ir
2
گروه علوم تربیتی، دانشکده علوم انسانی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
AUTHOR
سید محمد
شبیری
sm_shobeiri@pnu.ac.ir
3
گروه آموزش محیط زیست، دانشگاه پیام نور، تهران، ایران
AUTHOR
شهرام
کبودوندپور
s.kaboodvandpour@uok.ac.ir
4
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه کردستان، سنندج، ایران
AUTHOR
احسنی، ن.؛ اولادی، ج.؛ قصریانی، ف. و درویش، م.،1386. معرفی شیوهای برای اعمال مدیریت پایدار بر سرزمین، برمبنای معیارهای IUCN در استان کردستان، منطقه کوسالان و مریوان. فصلنامه تحقیقات مرتع و بیابان. جلد 14 شماره 4، صفحات 539 تا 558.
1
اداره کل حفاظت محیط زیست استان کردستان. 1395. گزارش مطالعات توجیهی منطقه حفاظت شده کوسالان.
2
اداره کل حفاظت محیط زیست استان کردستان. 1397. گزارش سرشماری حیات وحش مناطق تحت حفاظت.
3
اشرف زاده، م. و مرادی، ا.، 1396. برآوردی از وضعیت شکار در منطقه حفاظت شده چهل پا، استان خوزستان. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 4، صفحات 1 تا 10.
4
برخوردار، ب.، 1387. شناخت محیط زیست. انتشارات دانشگاه پیام نور. 180 صفحه.
5
برزه کار، ق.ا.، 1384. پارک ها و تفرجگاه های جنگلی (مکان یابی و طرح ریزی). انتشارات سازمان نظام مهندسی کشاورزی و منابع طبیعی. چاپ اول. 231 صفحه.
6
بسمعلی، م. و اسراری، ا.، 1393. بررسی تاثیر آموزش محیط زیست در کاهش شکار حیات وحش مطالعه موردی: منطقه حفاظت شده شاسکوه. دومین همایش ملی و تخصصی پژوهش های محیط زیست ایران. دانشگاه شهید مفتح همدان.
7
حیدری، ع.، 1382. تدوین الگوی مدیریتی توسعه پایدار آموزش محیط زیست برای نسل جوان کشور. پایان نامه کارشناسی ارشد مدیریت محیط زیست، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات تهران.
8
زمانی، ن.، 1389. بررسی و مقایسه عادات غذایی یوزپلنگ آسیایی در دو پناهگاه حیات وش نایبندان و دره انجیر استان یزد. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه تهران.
9
زمانی، ن.، و تراحی، ر.، 1396. تاثیر آموزش محیط زیست بر کاهش تعارض انسان و حیات وحش. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 9 ، شماره 4، صفحات 29 تا 40.
10
زمانی، ن. و قندالی، م.، 1396. مدل سازی و بررسی متغیرهای زیستگاهی تاثیرگذار بر پراکنش یوزپلنگ ایرانی با روش تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 3، صفحات 9 تا 16.
11
زمانی پور، ا.؛ محمدقلی نیا، ج. و غوث، ک.، 1390. کاربرد دانش بومی در تولید محصولات دامی، مطالعه موردی: ناحیه هردنگ، مطالعات فرهنگی اجتماعی خراسان. شماره 21، صفحات 74 تا 98.
12
صالحی، ص.، 1390. رفتارهای زیست محیطی، دانش زیست محیطی و تحصیلات. مجله علوم تربیتی. دوره 18، شماره 2، صفحات 201 تا 226.
13
ضیایی، ه.، 1388. راهنمای صحرایی پستانداران ایران. انتشارات کانون آشنایی با حیات وحش. چاپ سوم. 419 صفحه.
14
طبیعی، ا. و بجلی، آ.، 1395. سنجش افکار عمومی در ارتباط با آگاهی و حفاظت از گور ایرانی به عنوان نماد حیات وحش استان فارس. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 8، شماره 4، صفحات 17 تا 24.
15
طبیعی، ا. و جوادی ، ر.، 1397 . برآورد تمایل مردم بومی حاشیه ذخیره گاه زیستکره گنو به منظور حمایت مالی از گونه های پستاندار بزرگ جثه. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 10، شماره 1، صفحات 25 تا 34.
16
قربانی، م.؛ عوض پور، ل. و یوسفی، م.،1394. تحلیل و ارزیابی سرمایة اجتماعی در راستای تقویت تاب آوری جوامع محلی و مدیریت پایدار سرزمین. مجله منابع طبیعی ایران. دوره 68، شماره 2، صفحات 625 تا 645.
17
کرمی پورشمس آبادی،م.،1378. ارایه چارچوب نظری درخصوص چگونگی آموزش محیط زیست در نظام آموزش و پرورش کشور. رساله دکتری مدیریت آموزشی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات تهران.
18
مجنونیان، ه. و گشتاسپ، ح.، 1388. راهنمای طرح ریزی مناطق حفاظت شده. چاپ اول. انتشارات معارف. 122 صفحه.
19
مجنونیان، ه.، 1378. پارک های ملی و مناطق حفاظت شده ایران (ارزش ها و کارکردها). انتشارات زیبا. چاپ اول. 480 صفحه.
20
مجنونیان، ه.، 1380. پارک ها برای زندگی. انتشارات سازمان حفاظت از محیط زیست. چاپ اول. 425 صفحه.
21
مجنونیان، ه.، 1393. مناطق حفاظت شده، مبانی و تدابیر حفاظت از پارک ها و مناطق در ایران و جهان. انتشارات دینگار. چاپ اول. 414 صفحه.
22
ولایی، ع.، 1384. الگوهای رفتار با محیط زیست از دیدگاه قرآن و سنت، پایان نامه دکتری رشته علوم قرآن و احادیث، دانشگاه آزاد واحد علوم و تحقیقات تهران.
23
Amaja, L.G.; Hunde Feyssa, D. and Mekonnen Gutema, T., 2016. Assessment of types of damage and causes of human-wildlife conflict in Gera district, south western Ethiopia. Vol. 8, No. 5, pp: 49-54.
24
Berkes, F.; Colding, J. and Folke, C., 2008. Navigating social-ecological systems: building resilience for complexity and change. Cambridge University Press.
25
Damerell, P.; Howe, C. and Milner-Gulland, E.J., .2013. Child-orientated environmental education influences adult knowledge and household behaviour. Environmental Research Letters. Vol. 8, No. 1, pp: 105-106.
26
Dickman, A.J., 2010. Complexities of conflict: the importance of considering social factors for effectively resolving human, wildlife conflict. Animal Conservation. Vol. 13, pp:458-466.
27
Fascion, N. and Delacnand, S., 2004. people and predators from conflict to coexistence. Island press. Washington Covelo London.
28
Frick, J.; Kaiser, F.G. and Wilson, M., 2004. Environmental knowledge and conservation behavior: Exploring prevalence and structure in a representative sample. Personality and Individual differences. Vol. 37, No. 8, pp:1597-613.
29
García-Alvarado, J.; Santos, M.; Verde-Star, J. and Norma L., 2001. Traditional uses and scientific knowledge of medicinal plants from Mexico and Central America. Journal of herbs, spices & medicinal plants. Vol. 8, No. 2-3, pp: 37-89.
30
Barua, M.; Shonil, A. and Jadhav, S., 2013. The hidden dimensions of human, wildlife conflict: Health impacts, opportunity and transaction costs. Biological Conservation. Vol. 157, pp: 309-316.
31
Markert, L., 2002. Aspects of Cheetah (Acinonyx jubatus) Biology, Ecology and Conservation Strategies on Namibian Farmlands, PHD thesis, university of oxford.
32
Mills, M.G.L.; Broomhall, L.S. and Toit, J., 2004. Cheetah (Acinonyx jubatus) feeding ecology in the Kruger national park and a comparsion across African savanna habitat: is the cheetah only a successful hunter on open grassland plains? Wildly. Biol. Vol. 10, pp: 177-186.
33
Newmark, W.D.; Manyanza, D.N.; Gamassa, D.G.M. and Sariko, H.I., 1994. The conflict between wildlife and local people living adjacent to protected areas in Tanzania: human density as a predictor. Conservation Biology. Vol. 8, pp: 249-255.
34
Oğuz, D.; Çakci, I. and Kavas, S., 2010. Environmental awareness of university students in Ankara, Turkey. African Journal of Agricultural Research. Vol. 5, No. 19, pp: 2629-2636.
35
Rakshya, T., 2016. Living with wildlife: Conflict or co existence Acta Ecologica Sinica. Vol. 36, No. 6, pp: 509-514.
36
Salehi, S., 2010. People and the environment, LAP Lambert Academic publishing.
37
Vasilios, L.; Vasileios, J.K.; Georgari, M. and Baltzi, L., 2017. Public acceptance of management methods under different human, wildlife conflict scenarios.Science of TheTotal Environment. Vol. 579, pp: 685-693.
38
Williams, H., 2011. Examining the effects of recycling education on the knowledge, attitudes, and behaviors of elementary school students. Illinois Wesleyan University. Outstanding Senior Seminar Papers.
39
ORIGINAL_ARTICLE
ارائه مدل ترکیبی جهت ارزیابی ریسک های زیست محیطی استان مازندران با استفاده از روش های دیماتل و تابع زیان تاگوچی
ارزیابی ریسک های زیست محیطی(EAR) را می توان به عنوان یکی از ابزارهای مهم تحقق توسعه پایدار دانست. هدف از انجام این تحقیق شناسایی انواع ریسک های زیست محیطی استان مازندران و ارائه یک مدل ترکیبی به منظور ارزیابی و اولویت بندی آن ها می باشد که در نتیجه آن می توان مخاطرات زیست محیطی را به نحو مطلوب تری مدیریت نمود. در این تحقیق از نظرات 9 نفر از مدیران با تجربه اداره حفاظت محیط زیست استان مازندران و اساتید برجسته دانشگاهی در این حوزه به عنوان خبره استفاده و ساختار شکست ریسک های زیست محیطی در سه سطح تعریف گردید. سپس با استفاده از تکنیک دیماتل اهمیت دسته های ریسک و وزن آن ها تعیین شد. در مرحله بعد معیارهای مختلفی جهت ارزیابی ریسک ها مشخص و تعریف گردید که براساس روش تابع زیان تاگوچی، هر ریسک در هر معیار مورد ارزیابی قرار گرفت و امتیاز زیان آن ها محاسبه شد. براساس نتایج به دست آمده دسته های ریسک فرهنگی، فیزیکوشیمیایی و اقتصادی از اهمیت بیش تری برخوردار بوده و بر سایر دسته های ریسک تأثیرگذار می باشند. هم چنین پساب شهری و صنعتی، آفت و بیماری گیاهی و جانوری، برداشت بی رویه منابع جنگلی و معدنی، تخلیه و دفع پسماندها و ... به ترتیب به عنوان مهم ترین ریسک های زیست محیطی ارزیابی گردید.
http://www.aejournal.ir/article_104760_fcf483c6de67a951452914758025243a.pdf
2020-03-20
41
48
10.22034/aej.2020.104760
ریسک های زیست محیطی
ارزیابی ریسک
دیماتل
تابع زیان تاگوچی
امیررضا
ولیانی
amirreza.valyani@gmail.com
1
گروه مدیریت صنعتی، دانشکده مدیریت، واحد تبریز، دانشگاه آزاد اسلامی، تبریز، ایران
AUTHOR
ناصر
فقهی فرهمند
naser.feghhhi@gmail.com
2
گروه مدیریت صنعتی، دانشکده مدیریت، واحد تبریز، دانشگاه آزاد اسلامی، تبریز، ایران
LEAD_AUTHOR
سلیمان
ایران زاده
iranzadeh@iaut.ac.ir
3
گروه مدیریت صنعتی، دانشکده مدیریت، واحد تبریز، دانشگاه آزاد اسلامی، تبریز، ایران
AUTHOR
پارکر، ج.، 2008. مدیریت ریسک ها، ابعاد مدیریت ریسک و کاربرد آن در سازمان های مالی. ترجمه: پارسیان، ع.، 1389. سال 4، شماره 13-14، 144 صفحه.
1
جعفری آذر، س.؛ سبزقبائی، غ.؛ توکلی، م. و دشتی، س.، 13996. ارزیابی و تحلیل ریسک های زیست محیطی تالاب بین المللی خورخوران با استفاده از روش های تصمیم گیری چندمعیاره. علوم و مهندسی آبیاری. جلد 40، شماره 3، صفحات 63 تا 75.
2
راهنمای گستره دانش مدیریت پروژه. مؤسسه مدیریت پروژه (PMI). ترجمه ذکایی آشتیانی، م.، 1396. نشر آدینه.
3
سرخیل، ح.؛ رهبری ش.؛ نظری، ب. و توکلی، ج.، 1393. بررسی و مقایسه مطالعات ارزیابی محیط زیست و ارزیابی ریسک زیست محیطی؛ تاریخچه، روش ها و کاربرد با نگاه موردی به میدان نفتی یاران شمالی. دومین کنفرانس ملی مدیریت بحران و HSE در شریان های حیاتی، صنایع و مدیریت شهری.
4
عبدی پور، ل.، 1393. کاربرد روش AHP در ارزیابی ریسک محیط زیست در طرح های پتروشیمی. هفتمین همایش ملی و نمایشگاه تخصصی مهندسی محیط زیست.
5
میرغفوری، ح.؛ اسفندیاری، س. و صادقی آرانی، ز.، 1391. بررسی روابط علت و معلولی بین معیارهای کیفیت خدمات در کتابخانه ها با رویکرد ترکیبی لایب کوآل-دیماتل فازی. فصلنامه کتابداری و اطلاع رسانی. صفحات 92 تا 93.
6
Bryan Kethley, R., 2008. Using Taguchi Loss Function to Develop a single Objective Function in a Multi-Criteria Context: A Scheduling Example. International Journal of Information and management Sciences. Vol. 19, No. 4, pp: 589-600,
7
Certa, A.; Carpitella, S.; Enea, M. and Micale, R., 2016. A multi criteria decision making approach to support the risk management: a case study. In Proceedings of 21st Summer School Francesco Turco.
8
Davis, S., 2009. Becoming a knowledge-based business. International Journal of Technology Management. Vol. 14, pp: 60-73.
9
Deloitte, M. and Touche, L.L.P., 2012. Committee of Sponsoring Organizations of the Treadway Commission (COSO), Risk Assessment in Practice. pp: 2-3.
10
Hillson, D., 1999. Developing effective risk responses. Paper presented at the Proceedings of the 30th Annual Project Management Institute Seminars & Symposium.
11
Lambert, J.H.; Haimes, Y.; Li, D.; Schooff, R. and Tulsiani, V., 2001. Identification, ranking, and management of risks in a major system acquisition, Reliability Engineering & System Safety. Vol. 72, No. 3, pp: 315-325.
12
Lee, E.; Park, Y. and Shin, J.G., 2009. Large engineering project risk management using a Bayesian belief network. Expert Systems with Applications. Vol. 36, pp: 5880-5887.
13
Liao, C.N. and Kao, H.P., 2010. Supplier selection model using Taguchi lossfunction, analytical hierarchy process and multi-choice goal programming. Computers & Industrial Engineering. Vol. 58, No. 4, pp: 571-577.
14
Liua, S.Y.; Wanga, H.Q. and Lia, Y.L., 2012. Current Progress of Environmental Risk Assessment Research, Procedia Environmental Sciences. Vol. 13, pp: 1477-1483.
15
Marhavilas, P.K.; Koulouriotis, D. and Gemeni, V., 2011. Risk analysis and assessment methodologies in the work sites: On a review, classification and comparative study of the scientific literature of the period, 2000-2009, Journal of Loss Prevention in the Process Industries. pp: 477-523.
16
Nieto-Morote, A. and Ruz-Vila, F., 2011. A fuzzy approach to construction project risk assessment. International Journal of Project Management. Vol. 29, No. 2, pp: 220-231.
17
Topuz, E.; Talinli, I. and, Aydin, E., 2011. Integration of environmental and human health risk assessment for industries using hazardous materials: A quantitative multi criteria approach for environmental decision makers, Environment International. Vol. 37, pp: 393-403.
18
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین و اولویت بندی استراتژی های حفاظتی برای پناهگاه حیات وحش موته براساس وضعیت موجود
انجام برنامه ریزی و تعیین و اولویت بندی استراتژی های حفاظتی برای مدیریت مناطق حفاظت شده براساس وضع موجود، نقش بسیار مهمی را در موفقیت برنامه های حفاظتی بازی می کند. بدین منظور و برای دستیابی به بهترین استراتژی حفاظتی برای مدیریت پناهگاه حیات وحش موته براساس وضعیت فعلی، ابتدا با استفاده از تکنیک DPSIR وضعیت فعلی و چالش های پیش روی این پناهگاه در زمینه حفاظت شناسایی گردیدند و سپس با استفاده از تکنیک SWOT ضعف ها و قوت ها، فرصت ها و تهدیدهای این پناهگاه شناسایی و براساس آن ها 12 استراتژی حفاظتی پیشنهاد گردید. در مرحله بعد براساس نظرات کارشناسی و با استفاده از ماتریس ارزیابی عوامل داخلی و خارجی، ماتریس ارزیابی موقعیت و اقدام استراتژیک (SPACE) و در نهایت ماتریس برنامه ریزی استراتژیک کمی (QSPM) این 12 استراتژی اولویت بندی شدند. نتایج حاصل از این کار نشان داد که در حال حاضر پناهگاه حیات وحش موته بیش تر به استراتژی از نوع رقابتی نیاز دارد. استراتژی های رقابتی که در این مطالعه برای پناهگاه حیات وحش موته انتخاب شدند به ترتیب اولویت عبارتند از: درنظر گرفتن زونی برای چرای دام توسط اهالی (با توجه به وسعت بالا)، افزایش گشت زنی برای جلوگیری از شکار غیرمجاز (با توجه به تعداد مناسب محیط بانان و وسیع بودن منطقه) و ایجاد برنامههای گردشگری به این مناطق برای تغییر دیدگاه و افزایش آگاهی مردم (با توجه به تنوع زیستی و اکوسیستمی بالا).
http://www.aejournal.ir/article_104835_69d290a0208e9b2172a08bf4cd011f5b.pdf
2020-03-20
49
58
10.22034/aej.2020.104835
مناطق حفاظت شده
برنامه ریزی حفاظتی
ماتریس QSPM
ماتریس ارزیابی عوامل داخلی و خارجی
امید
قدیریان
omidghadirian90@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی، اصفهان، ایران
AUTHOR
فاطمه
خزاعی
f.khazaee69@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی، اصفهان، ایران
AUTHOR
علی
لطفی
lotfi@cc.iut.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی، اصفهان، ایران
LEAD_AUTHOR
احمدی، م.؛ کابلی، م.؛ ایمانی هرسینی، ج.؛ خسروی شریف آبادی، ر. و الماسی، م.، 1390. تدوین برنامه مدیریت استراتژیک جمعیت های گرگ (Canis lupus) در استان همدان با رویکرد کاهش تعارضات بین انسان و گرگ. نشریه محیط زیست طبیعی. دوره 65، شماره 3، صفحات 271 تا 281.
1
اسماعیل زاده، ح.؛ حیدری، م.؛ کانونی، ر. و یارمرادی، ک.، 1394. راهبرد بهینه پایدارسازی محیط زیست شهری محمود آباد (با بهره گیری از مدل SWOT و ماتریس QSPM). فصلنامه آمایش محیط. شماره 32، صفحات 125 تا 150.
2
پاداش، ا.؛ نبوی، س.؛ دهزاد، ب.؛ جوزی، س. و مرادی، ن.، 1389. برنامه راهبردی توسعه حفاظت محیط زیست در مناطق حفاظت شده دریایی (مطالعه موردی منطقه حفاظت شده مند استان بوشهر). پژوهش های محیط زیست. شماره 1، صفحات 53 تا 66.
3
جعفری، ش. و اراززاده، ی.، 1391. تدوین عوامل راهبردی مدیریتی جهت حفاظت تالاب انزلی با روش SWOT. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. دوره 3، شماره 10، صفحات 37 تا 46.
4
سالاری، ع. و ارجمندی، ر.، 1389. ارزیابی عوامل راهبردی زیست محیطی گسترش صنعت طبیعت گردی با روش SWOT (مطالعه موردی پارک ملی کویر). علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 12، شماره 3، صفحات 127 تا 136.
5
طهماسبی، س. و کاظمی، ع.، 1397. تعیین استراتژی های بهینه مدیریت پسماندهای الکتریکی و الکترونیکی در شرکت پیراحفاری ایران با استفاده از آنالیز SWOT و ماتریس QSPM. پذیرفته شده در فصلنامه علوم و تکنولوژی محیط زیست.
6
فرهادی خواه، ح.؛ زیاری، ک.؛ آروین، م. و ظفری، م.، 1397. برنامه ریزی راهبردی توسعه گردشگری با محوریت باغات (باغات سنتی شهر قزوین). پذیرفته شده در فصلنامه گردشگری شهری.
7
گزابی زاده، م.؛ سبزقبائی، غ. و دشتی، س.، 1397. تحلیل و ارزیابی راهبردهای حفاظتی تالاب هورالعظیم با استفاده از ماتریس های SWOT و QSPM. علوم و مهندسی آبیاری. جلد 41، شماره 4، صفحات 45 تا 59.
8
محمودی زاده، م.؛ کرباسی، ع. و صاحبی، م.، 1392. مدیریت زیست محیطی تالاب هشیلان به روش SWOT. فصلنامه علمی محیط زیست. شماره 57، صفحات 14 تا 27.
9
ملک حسینی، ف. و دشتی، س.، 1395. ارزیابی مخاطرات زیست محیطی منطقه حفاظت شده دنا با استفاده از روش تصمیم گیری چندمعیاره (TOPSIS). فصلنامه علوم محیطی. دوره 14، شماره 3، صفحات 41 تا 56.
10
هاشمی، ن.، 1389. نقش اکوتوریسم در توسعه پایدار روستایی. فصلنامه روستا و توسعه. شماره 3، صفحات 173 تا 188.
11
یزدانی، ع.؛ وهاب زاده اکبری، ق.؛ اولادی قادیکلایی، ج. و موسوی، س.، 1397. تعیین پتانسیل اکوتوریستی حوزه آبخیز چرات با استفاده از مدل SWOT. پذیرفته شده در فصلنامه علوم و تکنولوژی محیط زیست.
12
Atkins, J.P.; Burdon, D.; Elliott, M. and Gregory, A.J., 2011. Management of the marine environment: Integrating ecosystem services and societal benefits with the DPSIR framework in a systems approach. Vol. 62, pp: 215-226.
13
Butchart, S.H.M.; Walpole, M.; Collen, B.; van Strien, A.; Scharlemann, J.P.W.; Almond, R.E.A.; Baillie, J.E.M.; Bomhard, B.; Brown, C.; Bruno, J.; Carpenter, K.E.; Carr, G.M.; Chanson, J.; Chenery, A.M.; Csirke, J.; Davidson, N.C.; Dentener, F.; Foster, M.; Galli, A.; Galloway, J.N.; Genovesi, P.; Gregory, R.D.; Hockings, M.; Kapos, V.; Lamarque, J.F.; Leverington, F.; Loh, J.; McGeoch, M.A.; McRae, L.; Minasyan, A.; Morcillo, M.H.; Oldfield, T.E.E.; Pauly, D.; Quader, S.; Revenga, C.; Sauer, J.R.; Skolnik, B.; Spear, D.; Stanwell-Smith, D.; Stuart, S.N.; Symes, A.; Tierney, M.; Tyrrell, T.D.; Vie, J.C. and Watson, R., 2010. Global biodiversity: indicators of recent declines. Science. Vol. 328, pp: 1164-1168.
14
Coad, L.; Burgess, N.D.; Fish, L.; Ravillious, C.; Corrigan, C.; Pavese, H.; Granziera, A. and Besançon, C., 2008. Progress towards the convention on biological diversity terrestrial 2010 and marine 2012 targets for protected area coverage. Parks. Vol. 17, pp: 35-42.
15
David, F.R., 1986. The Strategic Planning Matrix: A Quantitative Approach. Long Range Planning. Vol. 5, PP: 102-107.
16
EEA., 1999. Environmental Indicators: Typology and Overview.
17
Ness, B.; Anderberg, S. and Olsson, L., 2010. Structuring problems in sustainability science: The multi-level DPSIR framework. Geoforum. Vol. 41, pp: 479-488.
18
Geldmann, J.; Barnes, M.; Coad, L.; Craigie, I.D.; Hockings, M. and Burgess, N.D., 2013. Effectiveness of terrestrial protected areas in reducing habitat loss and population declines. Biological Conservation. Vol. 161, pp: 230-238.
19
Houben, G.; Lenie, K. and Vanhoof, K., 1999. A knowledge-based SWOT-analysis system as an instrument for strategic planning in small and medium sized interprises. Decision Support Systems. No. 26.
20
Marvier, M.; Kareiva, P. and Neubert, M.G., 2004. Habitat Destruction, Fragmentation, and Disturbance Promote Invasion by Habitat Generalists in a Multispecies Metapopulation. Risk Analysis. Vol. 24, pp: 869-878.
21
Mintzberg, H.; Ahlstrand, B. and Lampel, J., 1998. Strategy safari: a guided tour through the wilds of strategic management, New York, Free Press. 416 p.
22
Nikolaou, I.E. and Evangelinos, K.I., 2010. A SWOT analysis of environmental management practices in Greek Mining and Mineral Industry. Resources Policy. Vol. 35, pp: 226-234.
23
Radder, L. and Louw, L., 1998. The SPACE Matrix: A Tool for calibrating competition. Long Range Planning. Vol. 31, pp: 549-559.
24
Segan, D.B.; Murray, K.A. and Watson, J.E., 2016. A global assessment of current and future biodiversity vulnerability to habitat loss-climate change interactions. Global Ecology and Conservation. Vol. 5, pp: 12-21.
25
Singh, S.P. and Singh, P., 2018. An Integrated AFS-Based SWOT Analysis Approach for Evaluation of Strategies Under MCDM Environment. Journal of Operations and Strategic Planning. Vol. 1, No. 2, pp: 1-19.
26
Walker, D. and Kendrick, G., 2009. Threats to Macroalgal Diversity: Marine Habitat Destruction and Fragmentation, Pollution and Introduced Species. Botanica Marina. Vol. 41, No. 6, pp: 105-112.
27
ORIGINAL_ARTICLE
ارتباط چندشکلی ژن PIT-I با صفات مرتبط با شیر در گاوهای نر هلشتاین ایران
این تحقیق به منظور تعیین ارتباط چندشکلی ژن عامل رونویسی خاص هیپوفیز یک (Pit-1) با ارزش های ژنتیکی صفات تولید شیر در گاوهای هلشتاین ایران انجام گرفت. بعد از دریافت اطلاعات ارزش های اصلاحی از مراکز اصلاح نژاد کشور، با استفاده از نمونههای خون 110 رأس گاو نر پروف شده یا در انتظار پروف از دو مرکز اصلاح نژاد شمال غرب و تهران، ژنوتیپ افراد با روش هضم آنزیمی (PCR-RFLP) و آنزیم محدودالاثر HifI برای جایگاه موجود در اگزون ششم تعیین گردید. تجزیه و تحلیل داده ها با استفاده از مدل مناسب و نرم افزار SAS انجام گرفت. در این بررسی دو الل (برش یافته G و برش نیافته A) و سه ژنوتیپ مشاهده شد به طوری که الل (Hinf1 +(G و ژنوتیپ GG فراوان ترین بودند. تغییرات فراوانی اللی و ژنوتیپی در طی سال های مختلف تولد حیوانات روند مشخصی را نشان نداد و در اکثر سال ها برتری با الل G بود. نتایج تجزیه واریانس نشان داد که ارتباط چندشکلی در جایگاه Pit-I-HinfI با تغییرات ارزش ژنتیکی صفات تولید شیر، تولید چربی، تولید پروتئین، درصد چربی و درصد پروتئین معنیدار نیست (0/05<p). جایگزینی اللی نشان داد که در صورت تغییر الل G به A تاثیر معنی داری در هیچ یک از صفات مورد مشاهده نخواهد شد. به نظر می رسد برای استفاده از چندشکلی ژن Pit-I در بهبود ژنتیکی صفات تولید شیر، نیاز است تحقیقات بیش تری انجام شود.
http://www.aejournal.ir/article_103997_8b35dc64506ae1f055e4eb46820db785.pdf
2020-03-20
59
64
10.22034/aej.2020.103997
چندشکلی
Pit-I
هلشتاین
صفات تولیدی
ابوالفضل
قربانی
abolfazlgorbani@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و دامپزشکی، واحد شبستر، دانشگاه آزاد اسلامی، شبستر، ایران
LEAD_AUTHOR
سعید
پرنعمت خانقاه
pornemat@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، واحد تبریز، دانشگاه آزاد اسلامی، تبریز، ایران
AUTHOR
ناصر
ماهری سیس
nama1349@gmail.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و دامپزشکی، واحد شبستر، دانشگاه آزاد اسلامی، شبستر، ایران
AUTHOR
مهدی
تقی نژاد رودبنه
taghinejad_mehdi@yahoo.com
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، واحد تبریز، دانشگاه آزاد اسلامی، تبریز، ایران
AUTHOR
Beauchemin, V.R.; Thomas, M.G.; Franke, D.E. and Silver, G.A., 2006. Evaluation of DNA polymorphisms involving growth hormone relative to growth and carcass characteristics in brahman steers. Genetic Molecular Research. Vol. 5, PP: 438-447.
1
Carrijo, S.M.; Alencar, M.M.D.; Tora, F.L.G. And Regitano, L.C.D.A., 2008. Association of Pit1 genotypes with growth traits in canchim cattle. Scintio. Agricola (Piracicaba, Graz.). Vol. 65, No. 2, pp: 116-121.
2
Cohen, L.E.; Wondisford, F.E. and Radovick, S., 1997. Role of Pit1 in the gene expression of growth hormone, prolactin, and thyrotropin. Endocrinology and Metabolism Clinics of North America. Vol. 25, pp: 523-540.
3
Dekkers, J., 2004 Commercial application of marker- and gene-assisted selection in livestock: Strategies and lessons. Journal of Animal Science. Vol. 82, pp: 313-328.
4
Dybus, A.; Szatkowska, I.; Czerniawska-piątkowska, E.; Grzesiak, W.; Wójcik, J.; Rzewucka, E. and Zych, S., 2004. PIT1-HinfI gene polymorphism and its associations with milk production traits in polish Black-and-White cattle. Archives Animal Breeding. Vol. 47, No. 6, pp: 557-563.
5
Falaki, M.; Gengler, N.; Sneyers, M.; Prandi, A.; Massart, S.; Formigoni, A.; Gurny, A.; Portetelle, D. and Renaville, R., 1996. Relationships of polymorphism for growth hormone and growth hormone receptor genes with milk production traits for Italian Holstein-Friesian Gulls; Journal of Dairy Science. Vol. 79, pp: 1446–1453.
6
Falconer, D.S. and Mackay, T.F.C., 1996. Introduction to Quantitative Genetics. 4th Edition, Prentice Hall, Essex.
7
Javanmard, A.; Asadzadeh, N. and Sarhadi, F., 2010. DNA Polymorphism of Govine Pituitary-Specific Transcription Factor and Leptin Gene between Iranian bos indicus and bos taurus Cattle. American J of Agricultural and biological Sciences. Vol. 5, No. 3, pp: 282-285.
8
Klauzinska, M.; Zwierzchowski, I.; Siadkowska, E.; Szymanowska, M.; Grochowska, R. and Zurkowski, M., 2000. Comparison of selected gene polymorphisms in Polish Red and Polish black-and-White cattle. Animal Science Papers and Reports. Vol. 18, pp: 107-116.
9
Li, S.; Crenshaw, E.G.; Rawson, E.J.; Simmons, D.M.; Swanson, L.W. and Rosenfeld, M.G., 1990. Dwarf locus mutants lacking three Pituitary cell types result from mutations in the POU-domain gene Pit1. Nature. Vol. 347, pp: 528-533.
10
Lucy, M.C.; Johnsson, G.S.; Shibuya, H.; Boyd, C.K.; Herring, W.O. and Werin, M., 1998. Rapid communication: Polymorphic (GT) microsatellite in the bovine somatotropin receptor gene promoter. Journal of Animal Science. Vol. 76, pp: 2209-2210.
11
Mangalam, H.J.; Albert, V.R.; Ingraham, H.A.; Kapiloff, M.; Wilson, L.; Nelson, C.; Elsholtz, H. and Rosenfeld, M.G., 1989. A Pituitary POU-domain protein, Pit1 activates Goth growth hormone & prolactin promoters transcriptionally. Genes & Development. Vol. 3, pp: 946-958.
12
Mattos, K.K., 2000. Polimorfismos de DNA nos genes GGH e PIT1 em populações zeGuínas e mestiças com aptidão leiteira e sua associação com características de produção. São Carlos: UFSCar, Tese (Doutorado). 92 p.
13
Mitra, A.P.; Schlee, E.; Galakrishnan, R. and Pirchner, F., 1995. Polymorphisms at growth-hormone and prolactin loci in Indian cattle and buffalo. Journal of Animal Breeding and Genetics. Vol. 112, pp: 71-74.
14
Moody, D.E.; Pomp, D. and Garendse, W., 1995. Restriction fragment length polymorphism in amplification products of the bovine Pit1 gene and assignment of Pit1 to bovine chromosome 1. Animal genetics. Vol. 26, pp: 45-47.
15
Ohta, K.; NoGukuni, Y.; MitsuGuchi, H.; Ohta, T.; Tohma, T.; Jinno, Y.; Endo, F. and Matsuda, I., 1992. Characterization of the gene encoding human Pituitary specific transcription factor, Pit1. Gene. Vol. 122, pp: 387-388.
16
Oprzadek, J.; Flisikowski, K.; Zwierchowska, I. and Dymnicki, E., 2003. Polymorphisms at loci of leptin (LEP), PIT1 and STAT5A and their association with growth, feed conversion and carcass quality in black-and-White Gulls. Animal Science Reports. Vol. 2, pp: 135-145.
17
Renaville, R.; Gengleer, N.; Vrech, E.; Prandi, A.; Massart, S.; Corradini, C.; Gertozzi, C.; Mortiaux, F.; Gurny, A. and Portetelle,D.,1997.Pit1 gene polymorphism, milk yield, and conformation traits for Italian Holstein Friesian Gulls. J. Dairy Science. Vol. 80, pp: 3431-3438.
18
Sagour, M.P.; Lin, C.Y.; Lee, A.J. and Macllister, A.J., 1996. Association between milk protein variants and genetics values of Canadian Holstein Gulls for milk yield traits. Journal of Dairy Science. Vol. 79, pp: 1050-1056.
19
Stancekova, K.; Vasicek, D.; Peskovicova, D.; Gulla, J. and KuGek, A., 1999. Effect of genetic variablity of the porcine Pituitary-specific transcription factor (Pit1) on carcass traits in pigs. Animal Genetics. Vol. 30, pp: 313-315.
20
Stasio, D.I.; Saratore, L. and Algera, S., 2002. lack of association of GH1 and Pou1F1 gene variants with meat production in Piemontese cattle. Animal Genetics. Vol. 33, pp: 61-64.
21
Tavakolian, J.; Zeinali, S.; Azimifar, B.; Asasdzadeh, N. and Javanmard, A., 2004. Molecular investigation of Pit1 gene in Sarabi cattle. Proceedings of the 1st Congress of Animal and Aquatic Science, August 31-September 2, Iran. pp: 842-842.
22
Theill, L.E.; Hattori, K.; Lazzaro, D.; Castrillo, J.L. and Karin, M., 1992. Differential splicing of the GHF1 primary transcript gives rise to two functionally distinct homeodomain proteins. Embo J. Vol. 11, pp: 2261-2269.
23
Yu, T.P.; Rothschild, M.F.; Tuggle, C.K.; Haley, C.; Archibald, A.; Marklund, L. and Anderson, L., 1996. Pit1 genotypes are associated with birth weight in three unrelated pig resource families. Journal of Animal Science. Vol. 74, No. 1, pp 22-26.
24
Yu, T.P.; Tuggle, C.K.; Schmitz, C.G. and Rothschild, M.F., 1995. Association of Pit1 polymorphism with growth and carcass traits in pigs. Journal of Animal Science. Vol. 73, pp: 1282-1288.
25
Zakizadeh, S.; Reissmann, M.; Rahimi, G.; Nejati Javaremi, A.; Reinecke, P.; Mirae-Ashtiani, SR. and Moradi Shahrbabak, M., 2007. Polymorphism of the bovine POU1F1 gene: allele frequencies and effects on milk production in three Iranian native breeds and Holstein cattle of Iran. Pakistan Journal of biological science. Vol. 10, No. 15, pp: 2575-2578.
26
Zhao, Q.; Davis, M.E. and Hines, H.C., 2004. Associations of polymorphisms in the Pit1 gene with growth and carcass traits in Angus beef cattle. Journal of Animal Science. Vol. 82, pp: 2229-2233.
27
Zwierzchowski, L.; Oprządek, J.; Dymnicki, E.; Dzierzgicki, P., 2001.: An association of growth hormone, α-casein, β-lactoglobulin, leptin and Pit1 loci polymorphism with growth rate and carcass traits in beef cattle. Animal Science Papers and Reports. Vol. 19, pp: 65-77.
28
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی افزودن آفلاتوکسین B1 و اسانس ترکیبی پوسته بادام هندی و دانه کرچک بر تخمیر شکمبه ای جیره غذایی دام در شرایط آزمایشگاهی
هدف از این مطالعه بررسی اثر آفلاتوکسین B1 بر تخمیر شکمبه ای جیره غذایی و امکان کاهش اثرات سوء آفلاتوکسین B1 بر تخمیر شکمبه ای در حضور افزودنی اسانس ترکیبی پوسته بادام هندی و دانه کرچک در شرایط آزمایشگاهی بود. این مطالعه شامل دو آزمایش بود. در آزمایش اول تیمارهای آزمایشی شامل جیره غذایی پایه همراه با سطوح مختلف آفلاتوکسین B1 به میزان 0، 0/5، 1 و 1/5 میکروگرم در میلی لیتر بودند. تیمارهای آزمایشی در آزمایش دوم شامل جیره غذایی آلوده با آفلاتوکسین B1 1( میکروگرم در میلی لیتر) به همراه سطوح مختلف اسانس گیاهی به ترتیب به میزان 0، 0/01، 0/1 و 0/2 میلی گرم در کیلوگرم جیره غذایی بودند. میزان گاز تولیدی در 2،4،6،8 ،12 ،24 ،36، 48، 72، 96 و 120 ساعت بعد از عمل انکوباسیون انجام ثبت شد. داده های به دست آمده در یک طرح آماری کاملاً تصادفی با 3 تکرار آنالیز گردید. نتایج نشان داد میزان گاز تولیدی بخش نامحلول و نرخ ثابت تولید گاز درگروه آفلاتوکسین با سطح 0/2 در مقایسه با گروه شاهد کم تر بود. بیش ترین گازتولیدی مربوط به تیمار شاهد و کم ترین گاز تولیدی مربوط به تیمار دریافت کننده بالاترین سطح آفلاتوکسین بود (0/05>P). افزودن آفلاتوکسین سبب کاهش فراسنجه های تخمینی شامل انرژی متابولیسم، انرژی خالص و قابلیت هضم ماده آلی در ماده خشک شد (0/05>P). اسانس دانه کرچک و بادام با افزایش تولید گاز و فراسنجه های تخمینی سبب کاهش نسبی اثرات منفی آفلاتوکسین بر تخمیر شکمبه در شرایط آزمایشگاهی شد. می توان نتیجه گرفت آفلاتوکسین سبب کاهش قابلیت هضم و تخمیر شکمبه ای شد و افزودن اسانس سبب بهبود تخمیر شکمبه ای جیره غذایی آلوده به آفلاتوکسین در شرایط برون تنی شد.
http://www.aejournal.ir/article_104041_aeffe9c552cf5218149415645f884262.pdf
2020-03-20
65
72
10.22034/aej.2020.104041
آفلاتوکسین
اسانس گیاهی
بادام
تولید گاز و دانه کرچک
ذبیح اله
نعمتی
znnemati@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تبریز، اهر، ایران
LEAD_AUTHOR
مقصود
بشارتی
m_besharati@hotmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تبریز، اهر، ایران
AUTHOR
امیر
کریمی
karimi.amir@gmail.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تبریز، اهر، ایران
AUTHOR
اسدزاده هروی، س؛ طهماسبی، ع.؛ ناصریان؛ ع. و ولی زاده، ر.، 1393. اثر جاذبه ای آلی و معدنی آفلاتوکسین B1 بر قابلیت هضم و متغیرهای تخمیری شکمبه در شرایط برون تنی. نشریه پژوهش های علوم دامی ایران. جلد 9، شماره 4، صفحات 413 تا 423.
1
قربانی، ه. و وکیلی، س.ع.، ۱۳۹۳. اثر مقادیر مختلف اسانس گیاهان نعناع و رازیانه بر ترکیب شیمیایی و فراسنجه های تولید گاز سیلاژ ذرت در شرایط برون تنی. ششمین کنگره علوم دامی ایران. دانشگاه تبریز.
2
مقصودلو، ف.، 1394. تاثیر تلقیح باکتریایی و اسانس های رزماری، رازیانه و زنیان به عنوان افزودنی بر ترکیب شیمیایی، فراسنجه های تولید گاز و قابلیت هضم سیلاژ ذرت در شرایط برون تنی. پایان نامه دکتری، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی گروه علوم دامی دانشگاه گنبدکاووس.
3
نعمتی، ذ.ا.؛ جانمحمدی، ح.؛ تقی زاده، ا.؛ ملکی نژاد، ح. و مقدم، غ.، 1394. تاثیر جاذب طبیعی بنتونیت در کاهش اثرات منفی آفلاتوکسین B1 برعملکرد و سیستم ایمنی در جوجه های گوشتی. تحقیقات تولیدات دامی. سال 4، شماره 3، صفحات 67 تا 77.
4
Adebo, O.; Njobeh, P.; Gbashi, S.; Nwinyi, O. and Mavumengwana, V., 2017. Review on microbial degradation of aflatoxins. Critical reviews in food science, Vol. 57, pp: 3208-3217.
5
AminiPour, H.; Naserian, A.A.; Vakili, A.R. and Tahmasbi, A.M., 2017. Effect of Essential Plant Oil Used as an Additive to Alter Silage Fermentation in Ruminant by In Vitro. Biosciences Biotechnology Research Asia, Vol. 14, pp: 145-152.
6
Azzoune, N.; Mokrane, S.; Riba, A.; Bouras, N.; Verheecke, C.; Sabaou, N. and Mathieu, F., 2016. Quality Assurance Safety of Crops Foods: Contamination of common spices by aflatoxigenic fungi and aflatoxin B1 in Algeria. International journal of food microbiology. Vol. 8, pp: 137-144.
7
Burt, S., 2004. Essential oils: their antibacterial properties and potential applications in foods, a review. International journal of food microbiology. Vol. 94, pp: 223-253.
8
Busquet, M.; Calsamiglia, S.; Ferret, A. and Kamel, C., 2005. Screening for the effects of natural plant extracts and secondary plant metabolites on rumen microbial fermentation in continuous culture. Animal Feed Science and Technology. Vol. 123, pp: 597-613.
9
Castillejos, L.; Calsamiglia, S. and Ferret, A., 2006. Effect of essential oil active compounds on rumen microbial fermentation and nutrient flow in in vitro systems. Journal of Dairy Science. Vol. 89, pp: 2649-2658.
10
Chaves, A.V.; Baah, J.; Wang, Y.; McAllister, T.A. and Benchaar, C., 2012. Effects of cinnamon leaf, oregano and sweet orange essential oils on fermentation and aerobic stability of barley silage. Journal of the Science of Food Agriculture. Vol. 92, pp: 906-915.
11
Cook, W.; Richard, J.; Osweiler, G. and Trampel, D., 1986. Clinical and pathologic changes in acute bovine aflatoxicosis: Rumen motility and tissue and fluid concentrations of anatoxins Bj and Mj. American journal of veterinary research. Vol. 47, 1817 p.
12
Curtis, J.L., 1996. Effect of variety on the forage yield, ensiling characteristics, and nutritive value of alfalfa, and effects of cutting, stage of maturity, and silage additives on the preservation and nutritive value of alfalfa silage, Kansas State University.
13
Danesh Mesgaran, M.; Mojtahedi, M.; Vakili, S.A. and Hayati-Ashtiani, M., 2013. Effect of aflatoxin B1 on in vitro rumen microbial fermentation responses using batch culture. Annual Review Research in Biology. Vol. 3.
14
Deans, S. and Svoboda, K.P., 1990. The antimicrobial properties of marjoram (Origanum majorana L.) volatile oil. Flavour Fragrance Journal. Vol. 5, pp: 187-190.
15
Di Pasqua, R.; Betts, G.; Hoskins, N.; Edwards, M.; Ercolini, D. and Mauriello, G., 2007. Membrane toxicity of antimicrobial compounds from essential oils. Journal of agricultural food chemistry. Vol. 55, pp: 4863-4870.
16
Dvorska, J.E.; Pappas, A.C.; Karadas, F.; Speake, B.K. and Surai, P.F., 2007. Protective effect of modified glucomannans and organic selenium against antioxidant depletion in the chicken liver due to T-2 toxin-contaminated feed consumption. Comparative Biochemistry Physiology Part C: Toxicology Pharmacology. Vol. 145, pp: 582-587.
17
Fedorah, P.M. and Hrudey, S.E., 1983. A simple apparatus for measuring gas production by methanogenic cultures in serum bottles. Environmental Technology. Vol. 4, pp: 425-432.
18
Fehr, P. and Delage, J., 1970. Effet de l'aflatoxine sur les fermentations dans le rumen. Acad science compt rend ser D.
19
Fink-Gremmels, J., 2008. Mycotoxins in cattle feeds and carry-over to dairy milk: a review. Food Additives Contaminants. Vol. 25, pp: 172-180.
20
Fraser, G.R.; Chaves, A.; Wang, Y.; McAllister, T.; Beauchemin, K. and Benchaar, C., 2007. Assessment of the Effects of Cinnamon Leaf Oil on Rumen Microbial Fermentation Using Two Continuous Culture Systems1. Journal of Dairy Science. Vol. 90, pp: 2315-2328.
21
Helferich, W.; Garrett, W.; Hsieh, D. and Baldwin, R., 1986. Feedlot performance and tissue residues of cattle consuming diets containing aflatoxins. Journal of animal science. Vol. 62 ,pp: 691-696.
22
Hodjatpanah Montazeri, A.; Danesh Mesgaran, M.; Vakili, S.A. and Tahmasbi, A.M., 2016. Effect of essential oils of various plants as microbial modifier to alter corn silage fermentation and in vitro methane production. Iranian Journal of Applied Animal Science. Vol. 6, pp: 67-78.
23
Iram, W.; Anjum, T.; Iqbal, M.; Ghaffar, A. and Abbas, M., 2015. Mass spectrometric identification and toxicity assessment of degraded products of aflatoxin B1 and B2 by Corymbia citriodora aqueous extracts. Scientific reports. Vol. 5, 14672 p.
24
Iram, W.; Anjum, T.; Iqbal, M.; Ghaffar, A. and Abbas, M., 2016. Structural elucidation and toxicity assessment of degraded products of aflatoxin B1 and B2 by aqueous extracts of Trachyspermum ammi. Frontiers in microbiology. Vol. 7, 346 p.
25
Jiang, Y.H.; Wang, P.; Yang, H.J. and Chen, Y., 2014. The efficacy of bamboo charcoal in comparison with smectite to reduce the detrimental effect of aflatoxin B1 on in vitro rumen fermentation of a hay-rich feed mixture. Toxins. Vol. 6, pp: 2008-2023.
26
Jiang, Y.; Yang, H. and Lund, P., 2012. Effect of aflatoxin B1 on in vitro ruminal fermentation of rations high in alfalfa hay or ryegrass hay. Animal feed science technology. Vol. 175, pp: 85-89.
27
Kamatou, G.; Makunga, N.; Ramogola, W. and Viljoen, A., 2008. South African Salvia species: a review of biological activities & phytochemistry. Journal of ethnopharmacology. Vol. 119, pp: 664-672.
28
Karlovsky, P., 1999. Biological detoxification of fungal toxins and its use in plant breeding, feed and food production. Natural toxins. Vol. 7, pp: 1-23.
29
Kiessling, K.H.; Pettersson, H.; Sandholm, K. and Olsen, M., 1984. Metabolism of aflatoxin, ochratoxin, zearalenone, and three trichothecenes by intact rumen fluid, rumen protozoa, and rumen bacteria. Applied environmental microbiology. Vol. 47, pp: 1070-1073.
30
Kubo, I.; Nihei, K.I. and Tsujimoto, K., 2003. Antibacterial action of anacardic acids against methicillin resistant Staphylococcus aureus (MRSA). Journal of agricultural food chemistry. Vol. 51, pp: 7624-7628.
31
Lindemann, M.; Blodgett, D.; Kornegay, E. and Schurig, G., 1993. Potential ameliorators of aflatoxicosis in weanling/growing swine. Journal of animal science. Vol. 71, pp: 171-178.
32
López, C.; Lima, K.; Manno, M.C.; Tavares, F.; Fernandes Neto, D.; Jesus, M. and Viana, M., 2012. Effects of cashew nut shell liquid (CNSL) on the performance of broiler chickens. Arquivo Brasileiro de Medicina Veterinária e Zootecnia. Vol. 64, pp: 1027-1035.
33
López, P.; Sánchez, C.; Batlle, R. and Nerín, C., 2007. Development of flexible antimicrobial films using essential oils as active agents. Journal of agricultural food chemistry. Vol. 55, pp: 8814-8824.
34
Luo, X.; Wang, R.; Wang, L.; Wang, Y. and Chen, Z., 2013. Structure elucidation and toxicity analyses of the degradation products of aflatoxin B1 by aqueous ozone. Food Control. Vol. 31, ,pp: 331-336.
35
Masood, M.; Iqbal, S.Z.; Asi, M.R. and Malik, N., 2015. Natural occurrence of aflatoxins in dry fruits and edible nuts. Food Control. Vol. 55, pp: 62-65.
36
McDougall, E., 1948. Studies on ruminant saliva. 1. The composition and output of sheep's saliva. Biochemical journal. Vol. 43, pp: 99-108.
37
Menke, K.H.; 1988. Estimation of the energetic feed value obtained from chemical analysis and in vitro gas production using rumen fluid. Vol. 28, pp: 7-55.
38
Moschini, M.; Gallo, A.; Piva, G. and Masoero, F., 2008. The effects of rumen fluid on the in vitro aflatoxin binding capacity of different sequestering agents and in vivo release of the sequestered toxin. Animal feed science technology. Vol. 147, pp: 292-309.
39
Nemati, Z.; Karimi, A. and Besharati, M., 2015. Impact of Aflatoxin Contaminated Feed and Yeast Cell Wall Supplementation on Immune System in Broiler Chickens. In: Proceedings of International Conference on Innovations in Chemical & Agricultural Engineering. pp: 8-9.
40
Ørskov, E. and McDonald, I., 1979. The estimation of protein degradability in the rumen from incubation measurements weighted according to rate of passage. The Journal of Agricultural Science. Vol. 92, pp: 499-503.
41
Orwa, C.; Mutua, A.; Kindt, R.; Jamnadass, R. and Simons, A., 2009. Agroforestree database: a tree species reference and selection guide version 4.0. World Agroforestry Centre ICRAF, Nairobi, KE.
42
Paparella, A.; Taccogna, L.; Aguzzi, I.; Chaves-Lopez, C.; Serio, A.; Marsilio, F. and Suzzi, G., 2008. Flow cytometric assessment of the antimicrobial activity of essential oils against Listeria monocytogenes. Food Control. Vol. 19, pp: 1174-1182.
43
Samarajeewa, U.; Sen, A.; Cohen, M. and Wei, C., 1990. Detoxification of aflatoxins in foods and feeds by physical and chemical methods. Journal of food protection. Vol. 53, pp: 489-501.
44
Samuel, M.S.; Sivaramakrishna, A. and Mehta, A., 2014. Degradation and detoxification of aflatoxin B1 by Pseudomonas putida. International Biodeterioration Biodegradation. Vol. 86, pp: 202-209.
45
SAS. 2004. Statistical Analysis System/STAT user guide, Version 9.1. 2. SAS Institute Inc Cary, NC.
46
Schollenberger, M.; Müller, H.M.; Rüfle, M.; Suchy, S.; Plank, S. and Drochner, W., 2006. Natural occurrence of 16 Fusarium toxins in grains and feedstuffs of plant origin from Germany. Mycopathologia. Vol. 161, pp: 43-52.
47
Upadhaya, S.D.; Park, M. and Ha, J.K., 2010. Mycotoxins and their biotransformation in the rumen: a review. Asian Australasian J of Animal Sciences. Vol. 23, pp: 1250-1260.
48
Upadhaya, S.D.; Sung, H.G.; Lee, C.H.; Lee, S.Y.; Kim, S.W.; Cho, K.J. and Ha, J.K., 2009. Comparative study on the aflatoxin B1 degradation ability of rumen fluid from Holstein steers and Korean native goats. Journal of veterinary science. Vol. 10, pp: 29-34.
49
Verheecke, C.; Liboz, T. and Mathieu, F., 2016. Microbial degradation of aflatoxin B1: current status and future advances. International j of food microb. Vol. 237, pp: 1-9.
50
Wang, F.; Xie, F.; Xue, X.; Wang, Z.; Fan, B. and Ha, Y., 2011. Structure elucidation and toxicity analyses of the radiolytic products of aflatoxin B1 in methanol, water solution. J of hazardous materials. Vol. 192, pp: 1192-1202.
51
Westlake, K.; Mackie, R. and Dutton, M., 1989. In vitro metabolism of mycotoxins by bacterial, protozoal and ovine ruminal fluid preparations. Animal Feed Science Technology. Vol. 25, pp: 169-178.
52
Yang, W.; Benchaar, C.; Ametaj, B.; Chaves, A.; He, M. and McAllister, T., 2007. Effects of Garlic and Juniper Berry Essential Oils on Ruminal Fermentation and on the Site and Extent of Digestion in Lactating Cows1. Journal of dairy science. Vol. 90, pp: 5671-5681.
53
ORIGINAL_ARTICLE
ارتباط جایگاه های T340C و G286A ژن GnRHR با صفات کیفی و کمی اسپرم گاوهای هلشتاین ایران
این پژوهش به منظور بررسی ارتباط جایگاه های G286A و T340C ژن گیرنده هورمون آزاد کننده گنادوتروپین (GnRHR) و صفات مرتبط با کیفیت اسپرم در جمعیت گاوهای نر هلشتاین انجام گرفت. اطلاعات فنوتیپی و نمونه های خون از 150 راس گاو نر موجود در دو مرکز اصلاح نژاد شیخ حسن تبریز و جاهد کرج بین سال های 1395-1368 جمع آوری شدند. جهت شناسایی چندشکلی های تک نوکلئوتیدی (SNP) ژن GnRHR از روش PCR-RFLP و آنزیم های برشی MboII و BspMI به ترتیب برای جایگاه های G286A و T340C استفاده گردید. در جایگاه T340C دو آلل T وC و در جایگاه G286A دو آلل A و G به دست آمد. آلل های G) 0/679) و T) 0/676) و ژنوتیپ های TC) 0/46) و GA) 0/45) بیش ترین فراوانی را داشتند. نتایج تجزیه واریانس، ارتباط معنی دار جایگاه های کاندیدای فوق را با اکثر صفات اسپرم نشان داد. نتایج مقایسه میانگین حاکی از برتری ژنوتیپ های هتروزیگوت GA و TC در جایگاه های مورد بررسی داشت. این مطالعه برای اولین بار ارتباط معنی دار ژن GnRHR را با صفات مرتبط با اسپرم در جمعیت گاوهای هلشتاین ایران بررسی نمود و نتایج حاکی از آن است که GnRHRدر فرآیندهای مختلف تولید اسپرم نقش دارد. با این حال، تحقیقات بیش تر ضروری است.
http://www.aejournal.ir/article_104167_59c9b15f0e3559abbdd3c108e5bab951.pdf
2020-03-20
73
78
10.22034/aej.2020.104167
GnRHR
صفات اسپرم
هلشتاین
چندشکلی
گاونر
محمدتقی
زرین نیا
mohammadtaghizarrinnia@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و دامپزشکی، واحد شبستر، دانشگاه آزاد اسلامی، شبستر، ایران
AUTHOR
ابوالفضل
قربانی
abolfazlgorbani@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و دامپزشکی، واحد شبستر، دانشگاه آزاد اسلامی، شبستر، ایران
LEAD_AUTHOR
Brito, L.F.; Silva, A.E.; Rodrigues, L.H.; Vieira, F.V.; Deragon, L.A. and Kastelic, J.P., 2002. Effects of environmental factors, age and genotype on sperm production and semen quality in Bus indicts and Bus Taurus AI bulls in Brazil. Animal Reproduction Science. Vol. 70, No. 3-4, pp: 181-190.
1
Cheng, C.K. and Leung, P.C.K., 2005. Molecular biology of gonadotropin- releasing hormone (GnRH)-1 and GnRH-11 and their receptors in humans. Endocrine Reviews. Vol. 25, No. 11, pp: 1-108.
2
Dai, L.; Zhao, Z.; Zhao, R.; Xiao, S.; Jiang, H.; Yue, X.; Li, X.; Gao, Y.; Liu, J. and Zhang, J., 2009. Effects of novel single nucleotide polymorphisms of the FSH beta-subunit gene on semen quality and fertility in bulls. Animal Reproduction Science. Vol. 114, No. 1-3, pp: 14-22.
3
Fortes, M.R.; Reverter, A.; Nagaraj, SH.; Zhang, Y.; Jonsson, NN.; Barris, W.; Lehnert, S.; BoeHansen, G.H. and Hawken, J., 2011. A single nucleotide polymorphism derived regulatory gene network underlying puberty in 2 tropical breeds of beef cattle. Journal of Animal Science. Vol. 89, No. 6, pp: 1669-1683.
4
Gadea, J., 2005. Sperm factors related to in vitro and in vivo porcine fertility. Theriogenology. Vol. 63, No. 2, pp: 431-444.
5
Gorbani, A.; Vaez Torshizi, R.; Bonyadi, M. and Amirinia, S., 2009. A MPs PCR-RFLP within bovine growth hormone gene and its association with sperm quality traits in Iranian Holstein bulls. African journal of Biotechnology. Vol. 8. No. 19, pp: 4811-4816.
6
Huang, S.Y.; Chen, M.Y.; Lin, E.C.; Tsou, H.L.; Kuo, H.Y.; Ju, C.C. and Lee, W.C., 2002. Effects of single nucleotide polymorphisms in the 5′-flanking region of heat shock protein 70.2 gene on semen quality in boars. Animal Reproduction Science. Vol. 70, pp: 99-109.
7
Huhtaniemi, I. and Alevizaki M., 2007. Mutations along the hypothalamic-pituitary–gonadal axis affecting male reproduction. Reproductive BioMedicine Online. Vol. 15, No. 6, pp: 622-632.
8
Li, G.; Wu, H.P.; Fu, M.Z. and Zhou, Z.Q., 2011. Novel single nucleotide polymorphisms of GnRHR gene and their association with litter size in goats. Archive Tierzucht. Vol. 54, No. 6, pp: 618-624.
9
Lin, C.L.; Ponsuksili, S.; Tholen, E.; Jennen, D.I.G.; Schellander, K. and Wimmers, K., 2006. Candidate gene markers for sperm quality and fertility of boar. Animal Reproduction Science. Vol. 92, pp: 349-363.
10
Liron, J.P.; Prando, A.J.; Fernandez, M.E.; Ripoli, M.V.; Rogberg-Munoz, A.; Goszczynski, D.E.; Posik, D.M.; Peral-Garcia, P.; Balbo, A. and Giovambattista, G., 2012. Association between GnRHR, LHR and IGF1 polymorphisms and timing of puberty in male Angus cattle. BMC Genetics. Vol. 2156, pp: 13-26.
11
Iyer, K.B.; Ingawale, M.V.; Kuralkar, S.V.; Bankar, P.S.; Sajid Ali, S.; Ingole, R.S.; Hajare S.W. and Pawshe, C.H., 2019. Association of GnRH receptor gene polymorphism on testicular parameters and semen quality in HF crossbred bulls. Indian Journal of Animal Research. Vol. 53, No. 9, pp: 1140-1143.
12
Kumar, S.; Ganguly, I.; DEB, R.; Singh, U.; Mandal, D.; Mann, S.; Singh, R.; Kumar, M. and Sharma, A., 2015. Elucidating the role of bovine GnRHR on semen quality traits among crossbred bull. The Indian journal of animal sciences. Vol. 85, No. 12, pp: 1314-1317.
13
Mathevon, M.; Buhr, M.M. and Dekkers, J.C.M., 1998. Environmental, management and genetic factors affecting semen production in Holstein bulls. Journal of dairy Science. Vol. 81, pp: 3321-3330.
14
Milazzotto, M.P.; Rahal, P.; Nichi, M.; Miranda-Neto, T.; Teixeira, L.A.; Ferraz, J.B.S.; Eler, J.P.; Campagnari, F. and Garcia, J.E., 2008. New molecular variants of hypothalamus-pituitary-gonad axis genes and their association with early puberty phenotype in Bos Taurus indicts (Nellore). Livestock Science. Vol. 114, pp: 274-279.
15
Nazi, R. and Sellamuthu, R., 2006. Receptors in Spermatozoa: Are they real? Journal of Andragogy. Vol. 27: pp: 627-636.
16
Rothschild, M.F. and Bidanel, J.P., 1998. Biology and genetics of reproduction. In: Rothschild, M.F., (Ed) The genetics of the pig. CAB International, Wallingford. pp: 313-343.
17
Saremi, M.; Saremi, A.M. and Tavallaei, M., 2008. Rapid genomic DNA extraction (RGDE). Forensic Science International: Genetics Supplement Series. Vol. 1, pp: 63-65.
18
Weinbauer, G.F.; Luetjens, C.M.; Simoni, M.; Nieschlag, E.; Ni-eschlag, E.; Behre, H.M. and Nieschlag, S., 2010. Physiology of testicular function in Andragogy Springer. Berlin. Vol. 10, pp: 11-59.
19
Wimmers, K.; Lin, C.L.; Tholen, E.; Jennen, D.G.; Schellander, K. and Ponsuksili, S., 2005. Polymorphisms in candidate genes as markers for sperm quality and boar fertility. Animal Genetic. Vol. 36, pp: 152-155.
20
Yang, W.C.; Tang, K.Q.; Yu, J.N.; Zhang, C.Y.; Zhang, X.X. and Yang, L.G., 2011. Effects of MboII and BspMI polymorphisms in the gonadotropin releasing hormone receptor (GnRHR) gene on sperm quality in Holstein bulls. Molecular Biology Reports. Vol. 38, No. 5, pp: 3411-3415.
21
Yang, W.U.; Tang, K.Q.; Zhang, C.H.; Deqing, X.U.; Wen, Q.U. and Yang, L.I.I., 2011. Polymorphism of the GnRHR gene and its association with litter size in Boer goats. South African Journal of Animal Science. Vol. 4, pp: 41-49.
22
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی مولکولی گونه های تیلریا اویس و تیلریا لستوکاردی در نشخوارکنندگان کوچک استان آذربایجان شرقی طی سال های 95-1394
گونه های تیلریا انگلهای تک یاخته ای خونی داخل سلولی اجباری هستند که توسط گونه های مختلف کنه های سخت منتقل شده و باعث تیلریوزیس می شوند. به لحاظ جغرافیایی، این بیماری دارای پراکندگی جهانی بوده و اکثراً در نواحی گرمسیر و نیمه گرمسیر دیده می شود. در ایران، آلودگی تیلریایی در نشخوارکنندگان کوچک توسط گونه های تیلریا اویس و تیلریا لستوکاردی ایجاد می شود. این مطالعه با هدف شناسایی مولکولی گونه های تیـلریا اویس و تیلـریا لستوکاردی در نشخوارکنندگان کوچک استان آذربایجان شرقی صورت گرفت. برای این منظور، مجموعاً 166 نمونۀ خون (125 رأس گوسفند و 41 رأس بز) از مناطق مختلف استان آذربایجان شرقی جمع آوری شدند و بررسی های مولکولی و میکروسکوپی روی آن ها انجام گرفتند. در نتایج مولکولی، 18 درصد نمونه ها صرفاً آلوده با تیلریا اویس بودند، ولی در بررسی میکروسکوپی آلودگی مشاهده نشد. آلودگی فقط مربوط به نمونه های گوسفند بود. از نظر آماری اختلافی بین آلودگی و سن و جنس مشاهده نشد (0/05<p). مقایسۀ توالی های محصولات PCR با توالی های مربوط به SSU rRNA موجود در بانک ژن نشان داد که توالی قطعات تکثیر شده در مطالعۀ حاضر 100-98 درصد با توالی های ثبت شده در بانک ژن یکسان می باشند. بررسی فیلوژنی نشان داد که توالی به دست آمده در مطالعه حاضر با بسیاری از توالی های به دست آمده از نقاط مختلف دنیا در سال های مختلف در یک مجموعه قرار گرفته و ارتباط نزدیکی با این توالی ها دارد. براساس یافته ها می توان گفت آلودگی تیلریایی به شکل تحت بالینی در بین نشخواکنندگان کوچک استان آذربایجان شرقی وجود داشته و تیلریا اویس عامل اصلی آلودگی تیلریایی می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_104848_ee69ab8574c2b6c56812770ba2360857.pdf
2020-03-20
79
86
10.22034/aej.2020.104848
تیلریا اویس
تیلریا لستوکاردی
نشخوارکنندگان کوچک
شناسایی مولکولی
آذربایجان شرقی
عباس
ایمانی باران
a.imani@tabrizu.ac.ir
1
گروه پاتوبیولوژی، دانشکدۀ دامپزشکی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
LEAD_AUTHOR
هادی
یوسفی تبریزی
hadiyosefi1187@gmail.com
2
گروه پاتوبیولوژی، دانشکدۀ دامپزشکی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
AUTHOR
مهدی
بساکی
mehdi.basaki@gmail.com
3
گروه علوم پایه، دانشکدۀ دامپزشکی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
AUTHOR
حمید
اکبری
h.akbari@tabrizu.ac.ir
4
گروه علوم درمانگاهی، دانشکدۀ دامپزشکی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
AUTHOR
احد
ازمانی
bazmany_ahad@yahoo.com
5
مرکز تحقیقات بیماری های عفونی و گرمسیری، دانشکدۀ پزشکی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
AUTHOR
Aktas, M.; Altay, K. and Dumanli, N., 2007. Determination of prevalence and risk factors for infection with Babesia ovis in small ruminants from Turkey by polymerase chain reaction. Parasitol Res, Vol. 100, No. 4, pp: 797-802.
1
Aktas, M.; Altay, K. and Dumanli, N., 2005. Survey of Theileria parasites of sheep in eastern Turkey using polymerase chain reaction. Small Rumin Res, Vol. 60, No. 3, pp: 289-293.
2
Alanazi, A.D.; Said, A.E.; Ghoneim, A.M.; Alyousif, M.S. and Alanazi, I.O., 2018. A comprehensive evaluation and first molecular report of Theileria ovis infection in small ruminants in Saudi Arabia. Trop Anim Health prod, DOI.org/10.1007/s11250-018-1663-y
3
Altay, K.; Aktas, M. and Dumanli, N., 2007. Theileria infections in small ruminants in the East and Southeast Anatolia. Türkiye Parazitol Derg, Vol. 31, No. 4, pp: 268-271.
4
Altay, K.; Dumanlia, N.; Holmanb, P.J. and Aktas, M., 2005. Detection of Theileria ovis in naturally infected sheep by nested PCR. Vet Parasitol, Vol. 127, No. 2, pp: 99-104.
5
Durrani, A.Z.; Younus, M.; Kamal, N.; Mehmood, N. and Shakoori, A.R., 2011. Prevalence of Ovine Theileria Species in District Lahore, Pakistan. Pakistan J Zool, Vol. 43, No. 1, pp: 57-60.
6
Foronda, P.; Casanova, J.C.; Valladares, B.; Martinez, E. and Feliu, C., 2004. Molecular systematics of several cyclophyllid families (Cestoda) based on the analysis of 18S ribosomal DNA gene sequences. Parasitol Res, Vol. 93, pp: 279-282
7
Hadziavdic, K.; Lekang, K.; Lanzen, A.; Jonassen, I.; Thompson, E.M. and Troedsson, C., 2014. Characterization of the 18S rRNA Gene for Designing Universal Eukaryote Specific Primers. PLoS ONE Vol. 9, No. 2, e87624. https://doi.org/10.1371/journal.pone. 0087624.
8
Hashemi-Fesharaki, R., 1997. Tick-borne diseases of sheep and goats and their related vectors in Iran. Parasitologia. Vol. 39, No. 2, pp: 115-117.
9
Heidarpour Bami, M.; Haddadzadeh, H.R.; Kazemi, B.; Khazraiinia, P.; Bandehpour, M. and Aktas, M., 2009. Molecular identification of ovine Theileria species by a new PCR–RFLP method. Vet Parasitol, Vol. 161, No. 3-4, pp: 171-177.
10
Heidarpour Bami, M.; Khazraiinia, P.; Haddadzadeh, H.R. and Kazemi, B., 2010. Identification of Theileria species in sheep in the eastern half of Iran using nested PCR RFLP and microscopic techniques. Iranian J Vet Res. Vol. 11, No. 3, pp: 262-266.
11
Inci, A.; Ica, A.; Yildirim, A. and Duzlu, O., 2010. Identification of Babesia and Theileria species in small ruminants in Central Anatolia (Turkey) via reverse line blotting. Turkey Journal of Vetaraniary Animal Sciences. Vol. 34, No. 2, pp: 205-210.
12
Iqbal, F.; Fatima, M.; Shahnawaz, S.; Naeem, M.; Shaikh, R.; Ali, M. and et al., 2011. A study on the determination of risk factors associated with babesiosis and prevalence of Babesia sp., by PCR amplification, in small ruminants from Southern Punjab (Pakistan). Parasite. Vol. 18, No. 3, pp: 229-234.
13
Irshad, N.; Qayyum, M.; Hussain M. and Khan, Q., 2010. Prevalence of tick infestation and theileriosis in sheep and goats. Pakistan Vetaraniary Journal. Vol. 30, No. 3, pp: 178-180.
14
Jalali, S.M.; Khaki, Z.; Kazemi, B.; Rahbari, S.; Shayan, P. and Bandehpour, M., 2014. Molecular Detection and Identification of Theileria Species by PCR-RFLP Method in Sheep from Ahvaz, Southern Iran. Iranian J Parasitol. Vol. 9, No. 1, pp: 99-106.
15
Mohammadi, M.; Esmaeilnejad, B. and Jalilzadeh-Amin, Gh., 2017. Molecular detection, infection rate and vectors of Theileria lestoquardi in goats from West Azerbaijan province, Iran. VRF. Vol. 8, No. 2, pp: 139-144.
16
Rashidi, A. and Razmi, G.R., 2013. Molecular detection of Theileria spp. in sheep and vector ticks in the North Khorasan Province, Iran. Trop Anim Health Prod. Vol. 45, No. 1, pp: 299-303.
17
Razmi, G.R.; Eshrati, H. and Rashtibaf, M., 2006. Prevalence of Theileria spp. infection in sheep in South Khorasan province, Iran. Vet Parasitol. Vol. 140, No. 3-4, pp: 239-243.
18
Razmi, G.R.; Pourhosseini, M.; Yaghfouri, S.; Rashidi, A. and Seidabadi, M., 2013. Molecular detection of Theileria spp. and Babesia spp. in sheep and Ixodid ticks from the northeast of Iran. J Parasitol. Vol. 99, No. 1, pp: 77-81.
19
Riaz, M. and Tarawar, Z., 2017. Identification of Theileria species (Theileria ovis and Theileria lestoquardi) by PCR in apparently healthy small ruminants in and around Multan, southern PUNJAB, PAKISTAN. J Anim Plant Sci. Vol. 27, No. 3, pp: 809-818.
20
Riaz, M.; Tasawar, Z. and Zaka Ullah, M., 2017. A survey on molecular prevalence, intensity and associated risk factors for ovine and caprine theileriosis from southern Punjab, Pakistan. Pakistan J Life Soc Sci. Vol. 15, No. 3, pp: 150-157.
21
Soosaraei, M.; Motavalli Haghi, M.; Etemadifar, F.; Fakhar, M.; Hosseini Teshnizi, S.; Ziaei Hezarjaribi, H. and Asfaram, S., 2018. Status of theileriosis among herbivores in Iran: A systematic review and Meta-analysis. Vet World. Vol. 11, No. 3, pp: 332-341.
22
Theodoropoulos, G.; Gazouli, M.; Ikonomopoulos, J.A.; Kantzoura, V. and Kominakis, A., 2006. Determination of prevalence and risk factors of infection with Babesia in small ruminants from Greece by polymerase chain reaction amplification. Vet Parasitol. Vol. 135, No. 2, pp: 99-104.
23
Uilenberg, G., 1995. International collaborative research: Significance of tick-borne hemoparasitic diseases to world animal health. Vet Parasitol. Vol. 57, No. 1-3, pp: 19-41.
24
Zaeemi, M.; Haddadzadeh, H.; Khazraiinia, P.; Kazemi, B. and Bandehpour, M., 2011. Identification of different Theileriaspecies (Theileria lestoquardi, Theileria ovis, and Theileria annulata) in naturally infected sheep using nested PCR–RFLP. Parasitol Res. Vol. 108, No. 4, pp: 837–843.
25
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر میکروجلبک اسپیرولینا و پروبیوتیک باسیلوس سوبتیلیس بر خصوصیات لاشه، مورفولوژی روده و فراسنجه های خون جوجه های گوشتی
این آزمایش به منظور مقایسه اثر افزودن میکروجلبک اسپیرولینا و پروبیوتیک باسیلوس سوبتیلیس در جیره بر خصوصیات لاشه، ریخت شناسی پرزهای روده و فراسنجه های خون جوجه های گوشتی انجام شد. تعداد 300 قطعه جوجه نر یکروزه نژاد راس 308 در قالب طرح کاملاً تصادفی با آرایش فاکتوریل 2×3 شامل سه سطح افزودنی اسپیرولینا پلاتنسیس (0، 0/05 و 0/1 درصد از جیره) و دو سطح افزودنی پروبیوتیک (0 و 0/05 درصد از جیره) درون 30 قفس زمینی توزیع و به مدت 24 روز پرورش یافتند. مصرف مخلوط 0/1 درصد اسپیرولینا و پروبیوتیک توانست وزن نسبی چربی حفره شکمی را در مقایسه با پرندگان تیمار حاوی 0/1 درصد اسپیرولینا و فاقد پروبیوتیک کاهش دهد. مصرف تیمار حاوی پروبیوتیک و فاقد اسپیرولینا سبب افزایش طول پرزها و نسبت طول پرز به عمق کریپت های دئودنوم در مقایسه با تیمار فاقد این افزودنی ها شد (0/05>P). در ژژونوم، تیمار مخلوط 0/05 درصد اسپیرولینا و پروبیوتیک طول پرزها را در مقایسه با تیمار حاوی فقط پروبیوتیک افزایش داد (0/05>P). افزودن اسپیرولینا یا پروبیوتیک توانست سبب کاهش درصد هتروفیل و نسبت هتروفیل به لمفوسیت در خون جوجه های گوشتی شود (0/05>P). نتایج این آزمایش نشان داد که مصرف اسپیرولینا، به ویژه سطح 0/1 درصد، به تنهایی و یا همراه با پروبیوتیک می تواند سبب بهبود کیفیت لاشه و خصوصیات پرزهای روده شود. هم چنین با توجه به تغییرات فراسنجه های خونی، هریک از این افرودنی ها جهت بهبود سلامت جوجه های گوشتی قابل توصیه هستند.
http://www.aejournal.ir/article_104854_92d0f8cbf4acbcee5c800dddf7e53479.pdf
2020-03-20
87
94
10.22034/aej.2020.104854
جوجه گوشتی
اسپیرولینا
پروبیوتیک
پرزهای روده
لیپید خون
محبوب الله
جویا
mahboobullah1990@gmail.com
1
گروه تغذیه دام و طیور، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
امید
عشایری زاده
o_ashayeri@yahoo.com
2
گروه تغذیه دام و طیور، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
بهروز
دستار
dastar392@yahoo.com
3
گروه تغذیه دام و طیور، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
Allahdo, P.; Ghodraty, J.; Zarghi, H.; Saadatfar, Z.; Kermanshahi, H. and Edalatian Dovom, M.R., 2018. Effect of probiotic and vinegar on growth performance, meat yields, immune responses, and small intestine morphology of broiler chickens. Italian Journal of Animal Science. Vol. 17, pp: 675-685.
1
Apata, D.F., 2008. Growth performance, nutrient digestibility and immune response of broiler chicks fed diets supplemented with a culture of Lactobacillus bulgaricus. Journal of the Science of Food and Agriculture. Vol. 88, pp: 1253-1258.
2
Awad, W.A.; Ghareeb, K.; Abdel-Raheem, S. and Bohm, J., 2009. Effects of dietary inclusion of probiotic and synbiotic on growth performance, organ weights, and intestinal histomorphology of broiler chickens. Poultry science. Vol. 88, pp: 49-56.
3
Bai, K.; Huang, Q.; Zhang, J.; He, J.; Zhang, L. and Wang, T., 2017. Supplemental effects of probiotic Bacillus subtilis fmbJ on growth performance, antioxidant capacity, and meat quality of broiler chickens. Poultry science. Vol. 96, No. 1, pp: 74-82.
4
Beheshtipour, H.; Mortazavian, A.M.; Mohammadi, R.; Sohrabvandi, S. and Khosravi-Darani, K., 2013. Supplementation of Spirulina platensis and Chlorella vulgaris Algae into probiotic fermented milks. Comprehensive Reviews in Food Science and Food Safety. Vol. 12, No. 2, pp: 144-154.
5
Campo, J.L. and Davila, S.G., 2002. Effect of photoperiod on heterophil to lymphocyte ratio and tonic immobility duration of chickens. Poultry science. Vol. 81, pp: 1637-1639.
6
Cotter, P.F., 2015. An examination of the utility of heterophil-lymphocyte ratios in assessing stress of caged hens. Poultry science. Vol. 94, pp: 512-517.
7
de Jesus Raposo, M.F.; de Morais, A.M. and de Morais, R.M., 2016. Emergent Sources of Prebiotics: Seaweeds and Microalgae. Mar Drugs. Vol. 14, 27 p.
8
Deng, R. and Chow, T.J., 2010. Hypolipidemic, antioxidant, and antiinflammatory activities of microalgae Spirulina. Cardiovascular therapeutics. Vol. 28, No. 4, pp: e33-e45.
9
FAO/WHO. 2001. Health and nutritional properties of probiotics in food including powder milk with live lactic acid bacteria, American Córdoba Park Hotel, Córdoba, Argentina.
10
Gibson, G.R.; Hutkins, R.; Sanders, M.E.; Prescott, S.L.; Reimer, R.A.; Salminen, S.J.; Scott, K.; Stanton, C.; Swanson, K.S.; Cani, P.D.; Verbeke, K. and Reid, G., 2017. Expert consensus document: the international scientific association for probiotics and prebiotics (ISAPP) consensus statement on the definition and scope of prebiotics. Nature reviews. Gastroenterology & hepatology. Vol. 14, pp: 491-502.
11
Haldar, S.; Ghosh, T.K.; Toshiwati and Bedford, M.R., 2011. Effects of yeast (Saccharomyces cerevisiae) and yeast protein concentrate on production performance of broiler chickens exposed to heat stress and challenged with Salmonella enteritidis. Animal Feed Science and Technology. Vol. 168, pp: 61-71.
12
Hou, T. and Tako, E., 2018. The In Ovo Feeding Administration (Gallus Gallus)-An Emerging In Vivo Approach to Assess Bioactive Compounds with Potential Nutritional Benefits. Vol. 10, 418 p.
13
Jayaraman, S.; Thangavel, G.; Kurian, H.; Mani, R.; Mukkalil, R. and Chirakkal, H., 2013. Bacillus subtilis PB6 improves intestinal health of broiler chickens challenged with Clostridium perfringens-induced necrotic enteritis. Poultry science. Vol. 92, pp: 370-374.
14
Kabell, S.; Igyarto, B.Z.; Magyar, A.; Hajdu, Z.; Biro, E.; Bisgaard, M. and Olah, I., 2006. Impact of heterophil granulocyte depletion caused by 5-fluorouracil on infectious bursal disease virus infection in specific pathogen free chickens. Avian pathology : journal of the W.V.P.A. Vol. 35, pp: 341-348.
15
Khatibjoo, A.; Mahmoodi, M.; Fattahnia, F.; Akbari-Gharaei, M.; Shokri, A.N. and Soltani, S., 2018. Effects of dietary short- and medium-chain fatty acids on performance, carcass traits, jejunum morphology, and serum parameters of broiler chickens. Journal of Applied Animal Research. Vol. 46, pp: 492-498.
16
Kordowska-Wiater, M.; Wasko, A.; Polak-Berecka, M.; Kubik-Komar, A. and Targonski, Z., 2011. Spirulina enhances the viability of Lactobacillus rhamnosus E/N after freeze-drying in a protective medium of sucrose and lactulose. Letters in applied microbiology. Vol. 53, pp: 79-83.
17
Li, C.l.; Wang, J.; Zhang, H.j.; Wu, S.G.; Hui, Q.R.; Yang, C.B.; Fang, R.j. and Qi, G.H., 2019. Intestinal Morphologic and Microbiota Responses to Dietary Bacillus spp. in a Broiler Chicken Model. Frontiers in Physiology. Vol. 9, 1968 p.
18
Liong, M.T.; Dunshea, F.R. and Shah, N.P., 2007. Effects of a synbiotic containing Lactobacillus acidophilus ATCC 4962 on plasma lipid profiles and morphology of erythrocytes in hyper cholesterolaemic pigs on high and low fat diets. The British journal of nutrition. Vol. 98, pp: 736-744.
19
Mehdi, Y.; Létourneau-Montminy, M.P.; Gaucher, M.L.; Chorfi, Y.; Suresh, G.; Rouissi, T.; Brar, S.K.; Côté, C.; Ramirez, A.A. and Godbout, S., 2018. Use of antibiotics in broiler production: Global impacts and alternatives. Animal Nutrition. Vol. 4, pp: 170-178.
20
Mirzaie, S. and Zirak-Khattab, F., 2018. Effects of dietary Spirulina on antioxidant status, lipid profile, immune response and performance characteristics of broiler chickens reared under high ambient temperature. Vol. 31, pp: 556-563.
21
Neyrinck, A.M.; Taminiau, B.; Walgrave, H.; Daube, G.; Cani, P.D.; Bindels, L.B. and Delzenne, N.M., 2017. Spirulina protects against hepatic inflammation in aging: an effect related to the modulation of the gut microbiota. Nutrients. Vol. 9, 633 p.
22
Niccolai, A.; Shannon, E.; Abu-Ghannam, N.; Biondi, N.; Rodolfi, L. and Tredici, M.R., 2019. Lactic acid fermentation of Arthrospira platensis (Spirulina) biomass for probiotic-based products. Journal of Applied Phycology. Vol. 31, pp: 1077-1083.
23
Palamidi, I.; Fegeros, K.; Mohnl, M.; Abdelrahman, W.H.; Schatzmayr, G.; Theodoropoulos, G. and Mountzouris, K.C., 2016. Probiotic form effects on growth performance, digestive function, and immune related biomarkers in broilers. Poultry science. Vol. 95, pp: 1598-1616.
24
Park, J.H.; Lee, S.I. and Kim, I.H., 2018. Effect of dietary Spirulina (Arthrospira) platensis on the growth performance, antioxidant enzyme activity, nutrient digestibility, cecal microflora, excreta noxious gas emission, and breast meat quality of broiler chickens. Poultry science. Vol. 97, pp: 2451-2459.
25
Park, S.H.; Lee, S.I.; Kim, S.A.; Christensen, K. and Ricke, S.C., 2017. Comparison of antibiotic supplementation versus a yeast-based prebiotic on the cecal microbiome of commercial broilers. PLoS One. Vol. 12, pp: e0182805.
26
Potten, C.S., 1998. Stem cells in gastrointestinal epithelium: numbers, characteristics & death. Philosophical transactions of the Royal Society of London. Vol. 353, pp: 821-830.
27
SAS. 2009. User’s Guide: Statistics, Version 9.2. SAS Inst. Inc., Cary, NC,US.
28
Seo, Y.J.; Kim, K.J.; Choi, J.; Koh, E.J. and Lee, B.Y., 2018. Spirulina maxima Extract Reduces Obesity through Suppression of Adipogenesis and Activation of Browning in 3T3-L1 Cells and High-Fat Diet-Induced Obese Mice. Nutrients. Vol. 10, 712 p.
29
Shokaiyan, M.; Ashayerizadeh, O.; Shams Shargh, M. and Dastar, B., 2019. Algal Crude fucoidan alone or with bacillus subtilis DSM 17299 in broiler chickens diet: growth performance, carcass characteristics, blood metabolites, and morphology of intestine. Poultry Science Journal. Vol. 7, pp: 87-94.
30
ŚWiĄTkiewicz, S.; Arczewska-WŁOsek, A. and JÓZefiak, D., 2015. Application of microalgae biomass in poultry nutrition. World's Poultry Science Journal. Vol. 71, pp: 663-672.
31
Tavaniello, S.; Maiorano, G.; Mucci, R.; Bogucka, J.; Stadnicka, K. and Bednarczyk, M., 2018. Prebiotics offered to broiler chicken exert positive effect on meat quality traits irrespective of delivery route. Poultry science. Vol. 97, pp: 2979-2987.
32
Tavernari, F.C.; Roza, L.F.; Surek, D.; Sordi, C. and Silva, M., 2018. Apparent metabolisable energy and amino acid digestibility of microalgae Spirulina platensis as an ingredient in broiler chicken diets. Vol. 59, pp: 562-567.
33
Taylor, R.L. and McCorkle, F.M., 2009. A landmark contribution to poultry science-Immunological function of the bursa of Fabricius. Poultry science. Vol. 88, pp: 816-823.
34
Teo, A.Y. and Tan, H.M., 2007. Evaluation of the Performance and Intestinal Gut Microflora of Broilers Fed on Corn-Soy Diets Supplemented With Bacillus subtilis PB6 (CloSTAT)1. The Journal of Applied Poultry Research. Vol. 16, pp: 296-303.
35
Voltarelli, F.A. and de Mello, M.A., 2008. Spirulina enhanced the skeletal muscle protein in growing rats. European journal of nutrition. Vol. 47, pp: 393-400.
36
Wang, S.; Peng, Q.; Jia, H.M.; Zeng, X.F.; Zhu, J.L.; Hou, C.L.; Liu, X.T.; Yang, F.J. and Qiao, S.Y., 2017. Prevention of Escherichia coli infection in broiler chickens with Lactobacillus plantarum B1. Poultry science. Vol. 96, pp: 2576-2586.
37
Wang, X.; Farnell, Y.Z.; Peebles, E.D.; Kiess, A.S.; Wamsley, K.G.S. and Zhai, W., 2016. Effects of prebiotics, probiotics, and their combination on growth performance, small intestine morphology, and resident lactobacillus of male broilers. Poultry science. Vol. 95, pp: 1332-1340.
38
Wang, X.; Kiess, A.S.; Peebles, E.D.; Wamsley, K.G.S. and Zhai, W., 2018. Effects of Bacillus subtilis and zinc on the growth performance, internal organ development, and intestinal morphology of male broilers with or without subclinical coccidia challenge. Poultry science. Vol. 97, pp: 3947-3956.
39
Zentek, J.; Hall, E.J.; German, A.; Haverson, K.; Bailey, M.; Rolfe, V.; Butterwick, R. and Day, M.J., 2002. Morphology and immunopathology of the small and large intestine in dogs with nonspecific dietary sensitivity. The Journal of nutrition. Vol. 132, pp: 1652s-1654s.
40
ORIGINAL_ARTICLE
اثر کاربرد پسماند کارخانجات آبلیموسازی بر عملکرد و پاسخ های ایمنی جوجه های گوشتی
به منظور جلوگیری از آلودگی های زیست محیطی ناشی از دفع پسماند کارخانجات آبلیموسازی و استفاده بهینه از این پسماند در تغذیه جوجه های گوشتی، آزمایشی در قالب طرح کاملاً تصادفی با 240 قطعه جوجه گوشتی سویه آربورآکرز با 4 تیمار و 4 تکرار و 15 جوجه در هر تکرار به مدّت 42 روز به اجرا درآمد. جوجه های یک گروه به عنوان گروه شاهد درنظر گرفته شده و با جیره غذایی بر پایه ذرت و سویا، تغذیه شدند. به منظور تغذیه سه گروه دیگر جیره غذایی پایه به ترتیب با 5، 7/5 و 10 درصد تفاله لیمو جایگزین ذرت شد. نتایج نشان داد که استفاده از سطوح 5 و 7/5 درصد تفاله لیمو در مقایسه با گروه شاهد تأثیرمعنی داری بر وزن بدن در هیچ کدام از دوره ها نشان نداد (0/05<P)، هرچند استفاده از سطح 10 درصدی آن به طور معنی داری سبب کاهش وزن بدن در مقایسه با گروه شاهد در دورههای 49-21 و 49-1 روزگی گردید (0/05>P). استفاده از سطح 10 درصدی تفاله لیمو افزایش ضریب تبدیل در دوره های 49-21 و 49-1 روزگی را در پی داشت (0/05>P). استفاده از سطح 10 درصدی تفاله لیمو غلظت کلسترول خون را کاهش و تولید آنتی بادی علیه گلبول های قرمز خون گوسفندی در سن 35 و 42 روزگی را افزایش داد (0/05>P). اگرچه سطح هموگلوبین و درصد هماتوکریت تحت تأثیر تیمارهای آزمایشی قرار نگرفت (0/05<P) ولی مقدار مواد واکنشگر با تیوباربیوتیک اسید تحت تأثیر قرار گرفت (0/05>P). به طورکلی استفاده از تفاله لیموترش تا سطح 7/5 درصد جیره بدون تأثیرمعنی دار بر وزن بدن می تواند سیستم ایمنی بدن را تحریک کند، بنابراین جایگزین مناسبی برای جیرههای طیور می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_104855_360b1dedacac40728661316687050e4f.pdf
2020-03-20
95
104
10.22034/aej.2020.104855
جوجه های گوشتی
تفاله لیمو
عملکرد
فرآسنجه های خونی
سیستم ایمنی
مهدی
مهرابادی
mehrabadimehdi@yahoo.com
1
گروه پرورش طیور، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فنی و حرفهای پاکدشت، پاکدشت، ایران
LEAD_AUTHOR
سید محسن
حسینی
mohsen.hoseini@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران
AUTHOR
رضایی، م.؛ کریمی ترشیزی، م.ا. و روزبهان. ی.، 1390. تعیین اثرات فیبر خوراکی بر عملکرد و مورفولوژی روده باریک جوجه های گوشتی. نشریه علوم دامی. جلد 90، شماره 1، صفحات 52 تا 60.
1
رضوی، ن.؛ وحدت پور، ت. و ابراهیم نژاد، یحیی.، 1396. اثرات مصرف سطوح مختلف تفاله لیموترش و کاهش انرژی و پروتئین جیره بر هورمون های مربوط به رشد، فرآسنجه های خون و عملکرد جوجه های گوشتی. پژوهش های تولیدات دامی.جلد 8، شماره 16، صفحات 94 تا 102.
2
صادقی، ک. و نوبخت، ع.، 1394. اثر تفاله های لیمو، انگور و سیب بر عملکرد، صفات لاشه، خصوصیات دستگاه گوارش، مورفولوژی روده و صفات ایمنی در جوجه های گوشتی. نشریه پژوهش های علوم دامی ایران. جلد 7، شماره 4، صفحات 366 تا 377.
3
مهرآبادی، م.؛ شریعتمداری، ف. و کریمی ترشیزی، م.ا.، 1390. ﻣﻘﺎﻳﺴﻪ اﺛﺮ آﻧﺘﻲ بیوفین، ﭘﺮوبیوتیک ﮔﺎلیپرو و آنتی بیوتیک ویرجینامایسین در جیره ﺣﺎوی ﺟﻮ ﺑﺮ ﻋﻤﻠﻜﺮد، ﻛﻠﺴﺘﺮول و ﺗﺮی گلیسرید خون و پاسخ ایمنی SRBC در جوجه های گوشتی. ﻓﺼﻠﻨﺎمه تحقیقات گیاهان دارویی ایران. جلد 27، شماره 3، صفحات 431 تا 439.
4
نوبخت، ع.، 1392. تأثیرات استفاده از سطوح گوناگون تفاله لیموترش خشک بر عملکرد و متابولیت های خون مرغ های تخم گذار مسن با جیره های بر پایه ذرت. نشریه علوم دامی ایران. جلد 4، شماره 44، صفحات 397 تا 404.
5
Abbasi, H.; Seidavi, A.; Liu, W. and Asadpour, L., 2015. Investigation on the effect of different levels of dried sweet orange (Citrus sinensis) pulp on performance, carcass characteristics and physiological and biochemical parameters in broiler chicken. Saudi Journal of Biological Science. Vol. 22, pp: 139-146.
6
AOAC. 2000. Official methods of analysis: and association of official analytical chemist. 15th ed. Virgina: USA.
7
Basir, R. and Toghyani, M., 2017. Effect of dietary graded levels of dried lemon (citrus aurantifulia) pulp on performance, intestinal morphology, and humoral immunity in broiler chickens. International Journal of Recycling of Organic Waste in Agriculture. Vol. 6, pp: 125-132.
8
Bradley, G.L.; Savage, T.F. and Timm, K.I., 1994. The effects of supplementing diets with saccharomyces cervisiae var. boulardi on male poultry performance and ileal morphology. Poultry Science. Vol. 73, pp: 1766-1770.
9
Chand, N.; Durrani, F.R.; Ahmad, S. and Khan, A., 2011. Immuno modulatory and hepatop rotective role of feed-added Berberis lyceum in broiler chicks. Journal of the Science of Food and Agriculture. Vol. 91, No. 10, pp: 1737- 1745.
10
Chaudry, M.A.; Badshan, A. and Bibi, N., 2004. Citrus waste utilization in poultry rations. European Poultry Science. Vol. 68, pp: 206-210.
11
Choct, M., 2009. Managing gut health through nutrition. British Poultry Science. Vol. 50, pp: 9-15.
12
Chowdhury,S.R.;Chowdhury,S.D.and Smith, T.K., 2003. Effects of dietary garlic on cholesterol metabolism in laying hens. Poultry Science. Vol. 81, pp: 1856-1862.
13
Ebrahimi, A.; Santini, A.; Alise, M.; Pourhossein. Z.; Miraalami, N. and Seidavi, A.R.,2015. Effect of dried Citrus sinensis peel on gastrointestinal microbiota and immune system traits of broiler chickens. Italalian Journal of Animal Science. Vol. 14, No. 4, pp: 712-717.
14
Fabris, N.; Mocchegiani, E.andProvinciali, M., 1995. Pituitarythyroid axis and immune system: A reciprocal neuroendocrine–immune interaction. Hormone Research. Vol. 43, pp: 29-38.
15
Frank, A.; Hans, H. and Earth, A., 2010. Effects of oral and intracecal pectin administration on blood lipids in minipigs. British Poultry Science. Vol. 30, pp: 745-754.
16
Grasman, K.A., 2010. In vivo functional test for assessing immunotoxicity in birds (Ed.), Immunotoxicity testing: methids and protocolos, methodsin molecular biology no Humana Press, product. 387397 p.
17
Hetland, H.; Choct, M. and Svihus, B., 2004. Role of insoluble non-starch polysaccharides in poultry nutrition. World’s Poultry Science Journal. Vol. 60, pp: 415-422.
18
Hexeberg, S.; Willumsen, N.; Rotevatn, S.; Hexeberg, E. and Berge, R.K., 1993. Cholesterol induced lipid accumulation in myocardial cells of rats. Cardiovascular Research. Vol. 27, pp: 442-446.
19
Hougee, S.; Sanders, A. and Faber, J., 2005. Decreased pro-inflammatory cytokine production by LPS-stimulated PBMC upon in vitro incubation with the flavonoids apigenin, luteolin or chrysin, due to selective elimination of monocytes macrophages. Biochemical Pharmacol. Vol. 69, pp: 241-248.
20
Ibrahim, M.R.; El-Banna, H.M.; Omara, I.I. and Suliman, A., 2011. Evaluation of nutritive value of some citrus pulp as feedstuffs in rabbit diets. Pakistan Journal of Nutrition. Vol. 10, pp: 667-674.
21
Karasawa, K.; Uzuhashi, Y.; Hirota, M. and Otani, H., 2011. Matured fruit extract of date palm tree (Phoenixdactylifera L.) stimulates the cellular immune system in mice. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 59, No. 20, pp: 11287-11293.
22
Kilic, B. and Richards, M.P., 2003. Lipid oxidation in poultry doner kebab: Pro-oxidative and antioxidative factors. Journal of Food Science. Vol. 68, pp: 686-689.
23
Langhout, D.J.; Schutte, J.B.; Van Leeuwen, P.; Wiebenga, J. and Tamminga, S., 1999. Effect of dietary high and lowmethylated citrus pectin on the activity of the ileal microflora and morphology of the small intestinal wall of broiler chicks. British Poultry Sci. Vol. 40, pp: 340-347.
24
Leveille, G.A. and Sauberlich, H.E., 1966. Mechanism of the cholesterol- depressing effect of pectin in the cholesterol fed rat. Journal of Nutrition. Vol. 88, pp: 209-214.
25
Lu, J.; Long, X.; He, Z., Shen, Y.; Yang, Y.; Pan, Y.; Zhang, J. and Li, H., 2018. Effect of dietary inclusion of dried citrus pulp on growth performance, carcass characteristics, blood metabolites and hepatic antioxidant status of rabbits. Journal of Applied Animal Research. Vol. 46, No. 1, pp: 529-533.
26
Martillotti, F.; Bartocci, S. and Terramoccia, S., 1996. Guida all’alimentazione dei ruminanti da latte. INEA, Rome (Italy).
27
Montagne, L.; Pluske, J.R. and Hampson, D.J., 2003. A review of interactions between dietary fibre and the intestinal mucosa, and their consequences on digestive health in young non-ruminant animals. Animal Feed Science Technology. Vol. 108, pp: 95-117.
28
Mourao, J.L.; Pinheiro, V.M.; Prates, J.A.M.; Bessa, R.J.B.; Ferreira, L.M.A.; Fontes, C.M.J.A. and Ponte, P.I.P., 2008. Effect of dietary dehydrated pasture and citrus pulp on the performance and meat quality of broiler chickens. Poultry Science. Vol. 87, pp: 733-743.
29
Nazok, A. and Rezaei, M., 2010. Effect of different levels of dried citrus pulp on performance, egg quality, and blood parameters of laying hens in early phase of production. Tropical Animal Health & Production. Vol. 42, pp: 737-742.
30
Nie, W. and Zhang, X.Y., 1999. Progress of the immune modulating effect of polysaccharides and their mechanism. Chinese Pharmacology Bulletin. Vol. 15, pp: 3-15.
31
Nobakht, A., 2013. Effects of different levels of dried lemon (Citrus aurantifulia) pulp on performance, carcass traits, blood biochemical and immunity parameters of broilers. Iran Journal Applied Animal Science. Vol. 3, pp: 145-151.
32
Nordi, E.C.P.; Costa, R.L.D.; David, C.M.G.; Parren, G.A.E.; Freitas, A.C.B.; Lameirinha, L.P.; Katiki, L.M.; Bueno, M.S.; Quirino, C.R. and Gama, P.E., 2014. Supplementation of moist and dehydrated citrus pulp in the diets of sheep artificially and naturally infected with gastrointestinal nematodes on the parasitological parameters and performance. Veterinary Parasitology. Vol. 205, No. 3, pp: 532-539.
33
Oluremi, O.I.A.; Ojighen, V.O. and Ejembi, E.H., 2006. The nutritive potentials of sweet orange (Citrus sinensis) rind in broiler production. International Journal of Poultry Science. Vol. 5, No. 7, pp: 613-617.
34
Rao, B.; Soufir, J.C.; Martin, M. and David, G., 1989. Lipid peroxidation in human spermatozoa as related to midpiece abnormalities and motility. Gamete Research. Vol. 24, No. 2, pp: 127-134.
35
Rizal, Y.; Mahata, M.E.; Andriani, M. and Wu, G., 2010. Utilization of juice wastes as replacement in broiler diet. Internaional Journal of Poultry Science. Vol. 9, pp: 886-889.
36
Santos, G.T.; Lima, L.S.; Schogor, A.L.B.; Romero, J.V.; De Marchi, F.E.; Grande, P.A.; Santos, N.W.; Santos, F.S. and Kazama, R.,2014. Citrus pulp as a dietary source of antioxidants for lactating Holstein cows fed highly polyunsaturated fatty acid diets. Asian-Australasian Journal of Animal science. Vol. 27, pp: 1104-1113.
37
Shahelian, R.M.D., 2005. Decreased pro-inflammatory cytokine production by LPS-stimulated PBMC upon in vitro incubation with the flavonoids apigenin, luteolin or chrysin, due to selective elimination of monocytes / macrophages. Bloch Pharmacy. Vol. 69, pp: 241-248.
38
Shastry, G.A., 1983. Veterinary clinical pathology. 2nd edn. CBS Publishers and Distributors, New Delhi.
39
Spence, K.M., 2002. In vivo evaluation of immune modulatory properties of crude extracts of Echinacea species and fractions isolated from Echinacea purpurea. PhD Thesis, University of southern Queensland, Australia. 110 p.
40
Tabook, N.M.; Kadim,I.T.;Mahgoub,O.andAlMarzooqi, W., 2006. The effect of date fiber supplemented with an exogenous enzyme on the performance and meat quality of broiler chickens. British Poultry Science. Vol. 47, pp: 73-82.
41
Voragen, A.G.J.; Beldman, G. and Schols, H., 2001. Chemistry and enzymology of pectin. Advanced Dietary Fiber Technologies B. V. McCleary and L. Prosky, ed. Blackwell Science, Oxford, Vol. 5, pp: 379-398.
42
Xu, Z.R.; Hu, C.H.; Xia, M.S.; Zhan, X.A. and Wang, M.Q., 2003. Effects of dietary fructooligosaccharide on digestive enzyme activities, intestinal microflora & morphology of male broilers. Poult. Sci. Vol. 82, pp: 1030-1036.
43
Zarei, M.; Ehsani, M. and Torki, M., 2011. Productive performance of laying hens fed wheat- based diets included olive pulp with or without a commercial enzyme product. African Journal of Biotechnology. Vol. 20, pp: 4303-4312.
44
Zhu, Q.Y.; Huang, Y. and Chen, Z.Y., 2000. Interaction between flavonoids and α-tocopherol in human Low Density Lipoprotein. J of Nutritional Biochemis. Vol. 11, pp: 14-21.
45
ORIGINAL_ARTICLE
مکمل سازی خوراکی پودر تفاله انگور بر کیفیت منی، غلظت تستوسترون و درصد جوجه درآوری در گله مادر گوشتی
در پژوهش حاضر تاثیر پودر تفاله انگور بر خصوصیات منی، سطح سرمی تستوسترون و باروری خروس های گله مادر گوشتی بررسی شد. تعداد 240 قطعه مرغ مادر و 24 قطعه خروس از سویهراس 308 با سن 31 هفتگی، در قالب طرح کاملاً تصادفی به سه گروه آزمایشی در 10 تکرار (8 قطعه مرغ و 1 قطعه خروس در هر تکرار) تقسیم بندی شد. پرندگان از هفته 32 تا هفته 41 در گروه شاهد از جیره استاندارد و در گروه های تیماری با جیره های دارای 1/5% و 3% تفاله خشک انگور (برحسب ماده خشک) تغذیه شدند. در انتهای آزمایش (هفته 41) برخی خصوصیات کیفی منی، مقادیر تستوسترون سرمی خروس ها و میزان جوجه درآوری مورد بررسی قرار گرفت. نتایج نشان داد که مکمل سازی تفاله انگور اثر معنی داری بر حجم منی و غلظت اسپرم خروسها نداشت (0/05<P). جنبایی کل، جنبایی پیش رونده و درصد زنده مانی اسپرم در پرندگان دریافت کننده 1/5 و 3 درصد تفاله انگور خوراکی نسبت به گروه شاهد بالاتر بود (0/05>P)، اما ریخت شناسی و یکپارچگی غشای پلاسمایی اسپرم ها تحت تاثیر تیمارها قرار نگرفت. علاوه بر این، مکمل سازی سه درصد تفاله انگور، به طور مؤثری (0/05>P) باعث افزایش تستوسترون سرمی و درصد جوجه درآوری نسبت به گروه شاهد شد (0/05>P). در نتیجه افزودن خوراکی فیبرهای آنتی اکسیدان مثل پودر تفاله انگور، ممکن است باعث بهبود کیفیت اسپرم و درصد جوجه درآوری در گله های مادر گوشتی شود.
http://www.aejournal.ir/article_104894_e9065bccbf19e6244edcef38f53d07fb.pdf
2020-03-20
105
112
10.22034/aej.2020.104894
خروس گله مادر
تفاله انگور
سطح سرمی تستوسترون
خصوصیات منی
وحید
واحدی
vvahedi@uma.ac.ir
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی مغان، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
LEAD_AUTHOR
فرهاد
صمدیان
fsamadian@yu.ac.ir
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه یاسوج، یاسوج، ایران
AUTHOR
روشنک
نوراحمدی
3
گروه علوم دامی، واحد تبریز، دانشگاه آزاد اسلامی، تبریز، ایران
AUTHOR
مرتضی
بهروزلک
morteza.behroozlak@gmail.com
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه پیام نور، تهران، ایران
AUTHOR
Abdel-Magied, E.M.; Abdel-Rahman, H.A. and Harraz, F.M., 2001. The effect of aqueous extracts of Cynomorium coccineum and Withania somnifera on testicular development in immature Wistar rats. Journal of Ethnopharmacology. Vol. 75, pp: 1-4.
1
Aitken, R.J.; Jones, K.T. and Robertson, S.A., 2012. Reactive oxygen species and sperm function-in sickness and in health. Journal of Andrology. Vol. 33, No. 6, pp: 1096-1106.
2
Akhlaghi, A.; Jafari Ahangari, Y.; Zhandi, M. and Peebles, E.D., 2014. Reproductive performance, semen quality, and fatty acid profile of spermatozoa in senescent broiler breeder roosters as enhanced by the long-term feeding of dried apple pomace. Animal Reproduction Science. Vol. 147, pp: 64-73.
3
Baker, H.W.; Brindle, J.; Irvine, D.S. and Aitken, R.J., 1996. Protective effect of antioxidants on the impairment of sperm motility by activated polymorphonuclear leukocytes. Fertility and sterility. Vol. 65, No. 2, pp: 411-419.
4
Bansal, A.K. and Bilaspuri, G., 2011. Impacts of oxidative stress and antioxidants on semen functions. Veterinary Medicine International. pp: 1-7.
5
Baumber, J.; Ball, B.A.; Gravance, C.G.; Medina, V. and Davies-Morel, M.C., 2000. The effect of reactive oxygen species on equine sperm motility, viability, acrosomal integrity, mitochondrial membrane potential and membrane lipid peroxidation. Journal of Andrology. Vol. 21, No. 6, pp: 895-902.
6
Biswas, N.M.; Chaudhuri, A.; Sarkar M. and Biswas, R., 1996. Effect of ascorbic acid on in vitro synthesis of testosterone in rat's testis. Indian Journal of Experimental Biology. Vol. 34, pp: 612-613.
7
Bitgul, G.; Tekmen, I.; Keles, D. and Oktay, G., 2013. Protective effects of resveratrol against chronic immobilization stress on testis. ISRN urology.
8
Bramwell, R.K.; McDaniel, C.D.; Wilson, J.L. and Howarth, B., 1996. Age effect of male and female broiler breeders on sperm penetration of the privitelline layer overlaying the germinal disc. Poultry Science. Vol. 75, pp: 755-76.
9
Cao, L.; Leer Suchetha, S. and Azhar, S., 2004. Aging alters the functional expression of enzymatic antioxidant defense systems in testicular rat Leydig cell. Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. Vol. 88, pp: 61-67.
10
Cecil, H.C. and Bakst, M.R., 1993. In vitro lipid peroxidation of turkey spermatozoa. Poultry Science. Vol. 72, pp: 1370-1378.
11
De Lamirande, E. and Gagnon, C., 1992. Reactive oxygen species and human spermatozoa. II. Depletion of adenosine triphosphate (ATP) plays an important role in the inhibition of sperm motility. Journal of Andrology. Vol. 13, No. 5, pp: 379-386.
12
Devasagayam, T.; Tilak, J.; Boloor, K.; Sane, K.S.; Ghaskadbi, S.S. and Lele, R., 2004. Free radicals and antioxidants in human health: current status and future prospects. Journal of Association Physicians India. Vol. 52, pp: 4.
13
Dias, T.R.; Alves, M.G.; Tomás, G.D.; Socorro, S.; Silva, B.M. and Oliveira, P.F., 2014. White tea as a promising antioxidant medium additive for sperm storage at room temperature: a comparative study with green tea. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 62, No. 3,
14
pp: 608-617.
15
Eid, Y.; Ebeid, T. and Younis, H., 2006. Vitamin E supplementation reduces dexamethasone–induced oxidative stress in chicken semen. British Poultry Science. Vol. 47, pp: 350-356.
16
Eid, Y.Z., 2010. Dietary grape pomace affects lipid peroxidation and antioxidative status in rabbit semen. World Rabbit Science. Vol. 16, No. 3, pp: 157-164.
17
González-Paramás, A.M.; Esteban-Ruano, S.; Santos Buelga, C.; de Pascual-Teresa, S. and Rivas-Gonzalo, J.C., 2004. Flavanol content and antioxidant activity in winery byproducts. Journal of Agricultrual and Food Chemitry. Vol. 52, No. 2, pp: 234-8.
18
Jakubcova, Z.; Horky, P.; Dostalova, L.; Sochor, J.; Tomaskova, L. and Baron, M., 2015. Study of antioxidant and antimicrobial properties of grapevineseeds, grape and rosehip pressings. Potravinarstvo® Scientific Journal for Food Industry. Vol. 9, No. 1, pp: 382-387.
19
Juan, M.E.; Gonzalez-Pons, E.G.; Munuera, T.; Ballester, J.; Rodriguez-Gil, J.E. and Planas, J.M., 2005. Trans Resveratrol a natural antioxidant from grapes increases sperm output in healthy rats. Journal of Nutrition. Vol. 135, pp: 757-760.
20
Karaca, A.G.; Parke, H.M. and McDaniel, C.D., 2002. Elevated body temperature directly contributes to heat stress infertility of broiler breeder males. Poultry Science. Vol. 81, pp: 1892-1897.
21
Lukaszewicz, E.; Jersey, A.; Partyka, A. and Siudzinska, A., 2008. Efficacy of evaluation of rooster sperm morphology using different staining methods. Research of Veterinary Science. Vol. 85, pp: 583-588.
22
Mahat, R.K.; Kumar, S.; Arora, M.; Bhale, D.V.; Mehta, R. and Batra, J., 2015. Role of oxidative stress and antioxidants in male infertility. Int J Health Sci Res. Vol. 5, No. 3, pp: 324-33.
23
Manju, D.K.E.; Thangave, A.; Leela, V. and Kalatharan, J., 2010. Effect of dietary supplementation of amla and grape seed on semen characteristics of broiler breeder cocks. Tamilnadu Journal of Veterinary and Animal Sciences. Vol. 6, No. 2, pp: 65-70.
24
Marin-Guzman, J.; Mahan, D.C. and Pate, J.L., 2000. Effect of dietary selenium and vitamin E on spermatogenic development in boars. Journal of Animal Science. Vol. 78, pp: 1537-1543.
25
Priya, K.T.; Manju, D.K.E.; Thangave. A. and Leela, V., 2012. Dietary supplementation of alma and grape seed on testosterone concentration and semen characteristics in broiler breeders. Tamilnadu Journal of Veterinary and Animal Sciences. Vol. 8, No. 5, pp: 253-258.
26
Roemer, K. and Roemar, M.M., 2002. The basis for the chemopreventive action of resveratrol. Drugs Today. Vol. 38, pp: 571-580.
27
Romero-Sanchez, H.; Plumstead, P.W.; Leksrisompong, N.; Brannan, K.E. and Brake, J., 2008. Feeding broiler breeder males. Deficient feed allocation reduces fertility and broiler progeny body weight. Poultry Science. Vol. 87, pp: 805-811.
28
Sanchez-Alonso, I.; Jimenez-Escrig, A.; Saura-Calixto, F. and Borderias, A.J., 2008. Antioxidant protection of white grape pomace on restructured fish products during frozen storage. LWT-Food Science and Technology. Vol. 41, pp: 42-50.
29
Schieber, M. and Chandel, N.S., 2014. ROS function in redox signaling and oxidative stress. Current Biology. Vol. 24, pp: R453-R462.
30
Sgorlon, S.; Stradaioli, G.; Stefanon, B.; Altimer, G. and Della-Loggia, R., 2005. Dietary grape polyphenols modulate oxidative stress in ageing rabbits. In Proc. 16th Nat. Congr. Aspa, Torino, Italy, Italian Journal of Animal Science. Vol. 4, No. 2, pp: 541-543.
31
Su, L.; Deng, Y.; Zhang, Y.; Li, C.; Zhang, R. and Sun, Y., 2011. Protective effects of grape seed procyanidin extract against nickel sulfate-induced apoptosis and oxidative stress in rat testes. Toxicology Mechanisms and Methods. Vol. 21, No. 6, pp: 487-494.
32
Vaze, A., 2007. Double-blind comparative trial of herbomineral antioxidant formulation with ubiquinone in oligoasthenospermia. Lancet Infectious Disease. Vol. 7, pp: 1057-1058.
33
Zareba, P.; Colaci, D.S.; Afeiche, M.; Gaskins, A.J.; Jørgensen, N.; Mendiola, J.; Swan, S.H. and Chavarro, J.E., 2013. Semen quality in relation to antioxidant intake in a healthy male population. Fertility and sterility. Vol. 100, No. 6, pp: 1572-1579.
34
Zhao, J.; Jin, Y.; Du, M.; Liu, W.; Ren, Y.; Zhang, C. and Zhang, J., 2017. The effect of dietary grape pomace supplementation on epididymal sperm quality and testicular antioxidant ability in ram lambs. Theriogenology. Vol. 97, pp: 50-56.
35
ORIGINAL_ARTICLE
تنوع زیستگاه و تغییرات فصلی بر فراوانی لاک پشت خزری (Mauremys caspica) و تعیین شاخص های تشخیص جنسیت نمونه ها دراستان گلستان
لاکپشت خزری (Mauremys caspica)، متعلق به خانواده Geoemydidae است. این گونه لاک پشت های آبزی در مراحل مختلف زندگی شان دارای زیستگاه های متفاوتی هستند. آن ها دارای جابجایی های نسبتاً محدود بوده که باعث تغییر تراکم جمعیتی آن ها در فصول معینی از سال می شود. در این مطالعه که از تابستان 1395 تا پایان بهار 1396 در طی 24 بار نمونه برداری به صورت فصلی ادامه یافت، 134 نمونه (65 ماده و 69 نر) لاکپشت خزری از 14 ایستگاه مختلف نمونه برداری در استان گلستان جمع آوری و 25 صفات مـورفومتریک آن ها اندازه گیری شد. نسبت جنسی 1 به 1 برای نر به ماده به دست آمد. همه صفات مورفومتریک توزیع نرمالی داشتند (0/001>P) به جز وزن W در ماده ها و چهار صفت وزن (W)، حداقل ﻃﻮل ﻻک شکمی (PL1)، عرض لوب جلویی پلاسترون (PFLW) و عرض لوب عقبی پلاسترون (PHLW) توزیع نرمال در نرها را نشان ندادند (0/001<P). در مقایسه پارامتری صفات، (TL1) طول قاعده دم (0/0000>p)، طول درز بین دو سپرمخرجی (AnSL) (P<0/005) و طول دم (TL2) (P<0/005)اختلاف معنی داری بین جنسیت ها نشان دادند،اما هیچ یک از 4 صفت غیر پارامتری اختلاف معنی دار بین نر و ماده نشان ندادند (0/66<P). نسبت TL2 به TL1 و نسبت TL1 به طول پل بین لاک پشتی و شکمی سمـت راسـت (RBrL) شـاخص های مهم برای تشخیص جنسیت نمونه ها می باشند. بیش ترین و کم ترین تعداد نمونه صید شده به ازای واحد تلاش صید، به ترتیب در تابستان با 52 و پاییز با 6 نمونه به دست آمد.
http://www.aejournal.ir/article_104903_0932db558839c15a68cd822c635bf1f7.pdf
2020-03-20
113
118
10.22034/aej.2020.104903
زیستگاه
فراوانی
تشخیص جنسیت
لاک پشت خزری
استان گلستان
مهسا
یازرلو
mahsayazarlo@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران
AUTHOR
حاجی قلی
کمی
hgkami2000@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
علی اکبر
باقریان یزدی
alibagherianyazdi@gmail.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران
AUTHOR
پورصوفی، ط.؛ قجقی، آ. و پاتیمار، ر.، 1397. شناسایی و تنوع زیستی گونه ای کفزیان رودخانه قره سو(جنوب شرق دریای خزر). مجله محیط زیست جانوری. سال10، شماره2، صفحات 283 تا 290.
1
حجتی، و.؛ کمی، ح.؛ پاشایی راد، ش. و ابراهیمی، م.، 1384. مقدمه ای بر زیست شناسی لاک پشت خزری ( Mauremy scaspica caspica) در استان های گلستان و مازندران. مجله پژوهش و سازندگی. شماره 66 ، صفحات60 تا 67.
2
حسن زاده، ن.؛ بلقیس زاده، ح. و یوسفی سیاه کلرودی، س.، 1397. بررسی فونستیک لاک پشت های استان البرز. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 10، شماره 1، صفحات 115 تا 122.
3
طاولی، م.؛ اسلامی، م. و مهدوی، س.م.، 1389. الگوی پراکنش و فراوانی مکانی و زمانی ماکروبنتوزهای سواحل جنوبی دریای خزر، (ساحل شهرستان چالوس). مجله علمی شیلات ایران. سال 19، شماره 4، صفحات 147تا 152.
4
سعیدپور، ب.، 1381. بررسی بیواکولوژی لاک پشت های دریایی در شمال خلیج فارس (حوزه آب های هرمزگان). رساله دکتری زیست شناسی دریا. 217 صفحه.
5
فیروز، ا.، 1387 .حیات وحش ایران. چاپ دوم، انتشارات مرکز نشر دانشگاهی تهران. 136 صفحه.
6
کریم پور، ر.؛ کمی، ح. و بهروزی راد، ب.، 1390. بررسی برخی خصوصیات لاک پشت خزری (Mauremys caspica) در منطقه حفاظت شده دز در استان خوزستان. فصلنامه دانش زیستی ایران. جلد 6، شماره 2، صفحات 15 تا 22.
7
کمی، ح.، 1378 . زیست شناسی لاک پشتان شمال ایران. هشتمین کنفرانس سراسری زیست شناسی ایران. دانشگاه رازی کرمانشاه، شهریور ماه. 20 صفحه.
8
لقمانی دوین، ا.، 1396. خصوصیات زیستی لاک پشت منقارعقابی، گونه در خطر انقراض و تخم گذار در سواحل جنوبی ایران. فصلنامه انسان و محیط زیست. شماره 43، صفحات 100 تا 110.
9
ناظم السادات، س.م. و قاسمی، ا.، 1383. تأثیر نوسان های دمای سطح آب دریای خزر بر بارش فصول زمستان و بهار نواحی شمالی و جنوب غربی ایران .مجله علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی. سال 8، شماره 4، صفحات 1 تا 14.
10
Atatür, M. and Ballasina, D., 1995. A preliminary report on the present status of Turkey’s terrestrial and freshwater turtles from the viewpoint of conservation. Red Data Book on Mediterranean Chelonians. pp: 183-190.
11
Fritz, U. and Freytag, O., 1993. The distribution of Mauremys in Asia minor and the first record of Mauremys caspica caspica for the internally drained central basin of Anatolia. Herpetozoa. Vol. 6, pp: 97-103.
12
Fritz, U. and Wischuf, T., 1997. Taxonomy of striped neck terrapin genus Mauremys in Southeast Europe and West Asia. Abstracts of the Thrid world Congress of Herpetology. August 2-10, 1997, Prague, Czech Republic, pp: 71-72.
13
Gibbons, J.W. and Lovich, J.E., 1990. Sexual dimorphism in turtles with emphasis on the slider turtle (Trachemys scripta). Herpetological Monographs. Vol. 4, pp: 1-29.
14
Janzen, F.J., 1991. Environmental sex determination in reptiles: Ecology, evolution and experimental design. The Quaterly review of Biology. Vol. 66, pp: 149-179.
15
Kami, H.G.; Hojati, V.; Pashaee Rad, S. and Sheidaee, M., 2006. A biological study of the European Pond Turtle, Emyorbicularis persica, and the Caspian pond turtle, Mauremys caspica caspica, in the Golestan and Mazandaran provinces of Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 37, pp: 21-28.
16
Kami, H.G.; Yadollahvand, R. and Kalbassi, M.R., 2012. Biological study of Caspian pond turtle (Mauremys caspica caspica). J of Animal Environment. Vol. 4, No. 3, pp: 1-10.
17
Safaei-Mahroo, B.; Ghaffari, H.; Fahimi, H.; Broomand, S.; Yazdanian, M.; NajafiMajd, E.; HosseinianYousefkhani, S.S.; Rezazadeh, E.; Hosseinzadeh, M.S.; Nasrabadi, R.; Rajabizadeh, M.; Mashayekhi, M.; Motesharei, A.; Naderi, A. and Kazemi, S.M., 2015. The Herpetofauna of Iran: Checklist of Taxonomy, Distribution and Conservation Status. Asian Herpetological Research. Vol. 6, pp: 257-290.
18
Terentev, P.V. and Chernov, S.A., 1949. Key to amphibians and reptiles, third edition (Translated from Russian by the israel Program for Scientific Translation) Translated by L. Kochva, L. 195 P.
19
Yadollahvand, R. and Kami, H.G., 2014. Habitat changes and its Impacts on the Caspian Pond Turtle (Mauremys caspica) Population in the Golestan and Mazandaran Provinces of Iran. Journal of Aqualculture Research & Development: 2155-9546 JARD, an open access journal. Vol. 5, No. 3, 2 p.
20
Yadollahvand, R.; Kami H.G. and Kalbassi M.R., 2013. Cytogenetic characreization of the Caspian Pond Turtle, Mauremys caspica, in Golestan and Mazandaran provinces, Iran. Zoology in the Middle. East. Vol. 3, pp: 214-219.
21
Yadollahvand, R.; Kami, H.G.; Mashroofeh, A. and Bakhtiari A.R., 2014. Assessment trace elements concentrations in tissues in Caspian Pond Turtle (Mauremys caspica) from Golestan province, Iran. Ecotoxicol Environ Saf. Vol. 101, pp: 191-195.
22
Yazarloo, M.; Kami, H.G. and Bagherianyazdi, a.a., 2017. Sexual dimorphism and morphometric study of Caspian pond turtle, Mauremys caspica, (Testudines: Geoemydidae) in Golestan Province, southeast of the Caspian Sea. Caspian J of Environmental Sciences (CJES). Vol. 15, No. 4, pp: 321-334.
23
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی فون مارهای منطقه حفاظت شده اساس در استان مازندران
منطقه حفاظت شده اساس با مساحت 2997 هکتار در جنوب شهرستان سوادکوه واقع در شرق جاده ارتباطی قائم شهر- تهران در استان مازندران قرار دارد. این مطالعه با هدف بررسی فون مارهای منطقه حفاظت شده اساس از فـروردیـن ماه 1393 تا اواخر آبان ماه 1393 انجام گرفته است. از نمونه های زنده در منطقه عکس برداری صورت گرفته و به آزمایشگاه منتقل شدند. در طی تحقیق 50 نمونه مار جمع آوری گردید و در مجموع 11 گونه از 10 جنس و 5 خانواده شناسایی شد که عبارتند از:Dolichophis Schmidti ،Elaphe dione ،Hemorrhois ravergieri ، latyceps najadum najadum،Telescopus fallax iberus ،Zamenis persicus ،Malpolon insignitus fuscus ، Natrix natrix persa،Natrix tessellata ،Xerotyphlops vermicularis ، Gloydius halys caucasicus. در این منطقه بیش ترین فراوانی مربوط به گوند مار (16 درصد) و افعی قفقازی (16 درصد) و کم ترین فراوانی مربوط به یله مار (2 درصد) بوده است. کلید شناسایی و نقشه پراکنش نمونه های منطقه نیز تهیه شده است.
http://www.aejournal.ir/article_104927_10b3df62816eb8010b518ff09127da4c.pdf
2020-03-20
119
126
10.22034/aej.2020.104927
منطقه حفاظت شده اساس
خزندگان
مارها
مازندران
ویدا
حجتی
vida.hojati@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران
LEAD_AUTHOR
مونا
ابراهیمی رهنما
m_ebrahimi9165@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران
AUTHOR
حجتی، و.؛ مقدس، د. و فقیری، ا.، 1388. شناسایی دوزیستان و خزندگان پارک ملی شهید زارع ساری. فصلنامه زیست شناسی جانوری. سال 1، شماره 3، صفحات 31 تا 38.
1
حجتی، و.؛ فقیری، ا. و بابایی سواسری، ر.، 1390. بررسی فون دوزیستان و خزندگان پارک ملی کیاسر در استان مازندران، فصلنامه زیست شناسی جانوری. سال 4، شماره 2، صفحات 33 تا 43.
2
درخشانپور، ز.؛ حجتی، و. و عباسپور، ح.، 1395. بررسی فونستیک مارهای منطقه حفاظت شده پرور در استان سمنان. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 8، شماره 2، صفحات 249 تا 258.
3
ذوالفقاری، ن.؛ حجتی و. و شجیعی، ه.، 1395. بررسی فون دوزیستان و مارهای منطقه شکار ممنوع هزار جریب در استان مازندران. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 8، شماره 3، صفحات 258 تا 251.
4
سازمان حفاظت محیط زیست ایران. 1390. لیست مناطق چهارگانه سازمان حفاظت محیط زیست. فروردین ۱۳۹5، بازبینی شده در ۲1 فروردین ۱۳۹5.
5
سلیمان فلاح، د.، 1392. بررسی فونستیک دوزیستان و خزندگان منطقه شکار ممنوع سفید کوه و آرسک استان سمنان. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه آزاد اسلامی واحد دامغان. 117 صفحه.
6
فرزان پی، ر.، 1369. مار شناخت. مرکز نشر دانشگاهی، چاپ اول. 284 صفحه.
7
فیروز، ا.، 1387. حیاتوحش ایران مهره داران. مرکز نشر دانشگاهی. 491 صفحه.
8
کمالی، ک.، 1392. راهنمای میدانی خزندگان و دوزیستان ایران. انتشارات ایران شناسی. 368 صفحه
9
لطیفی، م.، 1379. مارهای ایران. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. 478 صفحه.
10
نبوی، ش.؛ کمی، ح.ق. و حجتی، و.، 1392. مطالعه فونستیک خزندگان پناهگاه حیات وحش میانکاله در استان مازندران. فصلنامه زیست شناسی جانوری. سال 6، شماره 1، صفحات 77 تا 88.
11
Safaei-Mahroo, B.; Ghaffari, H.; Fahimi, H.; Broomand, S.; Yazdanian, M.; Najafi Majd, E.; Hosseinian Yousefkhani, S.S.; Rezazadeh, E.; Hosseinzadeh, M.S.; Nasrabadi, R.; Rajabizadeh, M.; Mashayekhi, M.; Motesharei, A.; Naderi, A. and Kazemi, S.M., 2015. The Herpetofauna of Iran: Checklist of Taxonomy, Distribution and Conservation Status. Asian Herpetological Research. Vol. 6, No. 4, pp: 257-290.
12
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه سن و اندازه بدن در دو جمعیت از قورباغه های مردابی (Pelophylax ridibundus) در شمال ایران
تعیین سن جانوران برای کسب اطلاعات در مورد تاریخ زندگی گونه ها، رشد، سن، طول عمر و ساختار جمعیت مهم است. در دوزیستان سن شناختی اسکلتی روشی موثر برای تخمین سن می باشد. در مطالعه حاضر تعیین سن در 50 نمونه (20 نر و 30 ماده) از دو جمعیت قورباغه Pelophylax ridibundus که در شمال ایران (رشت و ساری) پراکنش دارند انجام شد. نتایج برش انگشتان نشان داد که نرها به طور میانگین نسبت به ماده ها مسن ترند. محدوده سنی افراد جمعیت ها بین 4 تا 13 سال بود که میانگین سن در نرها 2/13±8/50 و میانگین سن در ماده ها 1/40±6/55 به دست آمد. جمعیت قورباغه های ساری بزرگ تر از قورباغه های رشت بودند. همبستگی بین سن و طول پوزه تا مخرج (SVL) در هر دو محل مثبت بود. با این مطالعه، اطلاعات جدیدی درباره سن و اندازه P. ridibundus در شمال ایران به دست آمد. این نوع مطالعات در مورد گونه های یکسان و مشابه امکان می دهد تا اثرات زیست محیطی بر تاریخچه حیات آن ها درک شود. سن بلوغ برای طرح ریزی مطالعه تولیدمثل و برنامه های حفاظتی در آینده مفید خواهد بود.
http://www.aejournal.ir/article_104938_c74730d787e2c12197b1714f2c8423b5.pdf
2020-03-20
127
132
10.22034/aej.2020.104938
سن شناختی اسکلتی
تعیین سن
Pelophylax ridibundus
Ranaidae
فریبا
رجبی
tm.rajaby@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه گیلان، رشت، ایران
AUTHOR
اسماعیل
نوغانچی
knoghanchesabet@chmail.ir
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه گیلان، رشت، ایران
AUTHOR
حسین
جوانبخت
hjavanbakht@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه گیلان، رشت، ایران
LEAD_AUTHOR
اشکاوندی، ص.؛ قارزی، ا. و عباسی، م.، 1393. مقایسه ترکیب سنی در دو جمعیت از گونه های دوزیست بی دم مخمل کوه با استفاده از روش اسکلتوکرونولوژی. پژوهش های جانوری. جلد 27، شماره 2، صفحات 176 تا 184.
1
Ashkavandi, S.; Gharzi, A. and Abbassi, M., 2012. Age Determination by in Skeletochronology Rana Ridibunda (Anuran: Amphibia). Asian Journal of Experimental Biological Sciences. Vol. 3, No. 1, pp:156-162.
2
Bastein, H. and Leclair, R., 1992. Aging wood frogs (Rana sylvatica) by Skeletochronology. Journal of Herpetology. Vol. 26, No. 2, pp: 222-225.
3
Cakir, E.; Kutrup, B.; Colak, Z.; Bulbul, U. and Karaoglu, H., 2011. Age and growth of green Toad, Bufo viridis (Laurenti, 1768) from and island and a mainland population in giresun, Turkey. Journal of Animal and Veterinary Advances. Vol. 10, No. 11, pp:1469-1472.
4
Çakır, E.; Bülbül, U.; Özdemir, N. and Kutrup, B., 2011. A skeletochronological study of age, growth and longevity of Rana macrocnemis populations from four locations at different altitudes in Turkey. Amphibia-Reptilia. Vol. 32, No. 1, pp:113-118.
5
Farasat, H. and Sharifi, M., 2016. Ageing and Growth of the Endangered Kaiser's Mountain Newt, Neurergus kaiseri (Caudata: Salamandridae), in the Southern Zagros Range, Iran. Journal of Herpetology. Vol. 50, No. 1, Vol: 120-126.
6
Halliday, T.R. and Verrell, P.A., 1988. Body size and age in amphibians and reptiles. Journal of Herpetology. Vol. 22, No. 3, pp: 253-265.
7
Khonsue, W.; Matusui, M. and Misawa, Y., 2000. Age determination of Rana nigrovittata, a frog from tropical forest of Thailand. Zoological Science. Vol. 17, pp: 253-257.
8
Kusano, T.; Fukuyama, K. and Miyashita, N., 1995. Age determination of the stream frog, Rana sakuraii by Skeletochronology. Journal of Herpetology. Vol. 29, pp: 625-628.
9
Kutrop, Y.N.; Cobanoglu, U. and Ozoran, Y., 2005. Age determination and some growth parameters of a Rana ridibunda population in turkey. Acta Zoologica Academiae Scientiarum Hungaricae. Vol. 51, No. 1, pp: 67-74.
10
Leclair, R.; Leclair, M.H.; Dubois, J. and Daoust, J., 2000. Age and size of wood frogs, Rana sylvatica, from Kuujjuarapik, Northern Quebec. The Canadian Field Naturalist. Vol. 114, No. 3, pp: 381-387.
11
Matthews, K.R. and Claude, M., 2007. A Skeletochronological Study of the Age Structure, Growth, and Longevity of the Mountain Yellow-legged Frog, Rana muscosa, in the Sierra Nevada, California. Copeia. Vol. 4, pp: 986-993.
12
McCreary, B.; Pearl, C.A. and Adams, J.M., 2008. A protocol for aging Anurans using skeletochronology. US Geological Survey Open-File Report. 1209 p.
13
MacCoy, E.D.; Mushinsky, H.R.; Shockley, W.J. and Alvarez, M.R., 2010. Skeletochronology of the threathened Florida sand skink, Plestiodon (Neoseps) reynoldsi, Copeia. Vol. 1, No. 1, pp: 38-40.
14
Pesarakloo, A.; Rastegar-Pouyani, E.; Rastegar-Pouyani, N. and Kami, H., 2017. The first taxonomic revaluation of the Iranian water frogs of the genus Pelophylax (Anura: Ranidae) using sequences of the mitochondrial genome. Mitochondrial DNA Part A. Vol. 28, No. 3, pp: 392-398.
15
Schroeder, E.E. and Baskett, T.S., 1968. Age estimation, growth rates and population structure in Missouri bullfrogs, Copeia. Vol. 19, No. 3, pp: 583-592.
16
Sinsch, U., 2015. Skeletochronological assessment of demographic life-history traits in amphibians. Herpetological Journal. Vol. 25, pp: 5-13.
17
Smirina, E.M., 1994. Age determination and longevity in amphibians. Gerontology. Vol. 40, pp: 133-46.
18
Üzüm, N.; Avcı, A.; Özdemir, N.; Ilgaz, Ç. and Olgun, K., 2011. Body size and age structure of a breeding population portion of the Urmia salamander, Neurergus crocatus Cope, 1862 (Caudata: Salamandridae). Italian Journal of Zoology. Vol. 78, No. 2, pp: 209-214.
19
Varol Tok, C.; Mert Gürkan, M.; Yakin, Y. and Hayretdağ, S., 2013. Age Determination in Some Ophisops elegans Mènètriès 1832 (Sauria: Lacertidae) Populations Living in the Vicinity of Çanakkale and Akşehir-Eber. Ecological Balcanica. Vol. 5, No. 2, pp: 23-30.
20
Yaman Yakına, B.; Çiçekb, K.; Koyunc, M.; Gürkana, M.; Hayretdağa, S. and Varol Toka, C., 2015. A skeletochronological analysis of a population of the Anatolia Newt, Neurergus strauchii (Steindachner,1887) (Caudata: Salamandridae), in Eastern Anatolia, Turkey. Zoology in the Middle East. Vol. 61, No. 4, pp: 332–338.
21
Zivari, S. and Kami, G., 2017. Skeletochronological assessment of age in the Persian mountain salamander, Paradactylodon gorganensis (Clergue-Gazeau and Thorn, 1979) (Caudata: Hynobiidae) from Golestan Province, Iran. Caspian Journal of Environmental Science. Vol. 15, No. 1, pp: 75-84.
22
ORIGINAL_ARTICLE
پیراسنجههای رشد، نرخ مرگ و میر و نسبت بهرهبرداری ماهی زرده (Euthynnus affinis Cantor, 1849)، در آبهای استان هرمزگان
ماهی زرده یکی از تون ماهیان اقتصادی در شمال خلیج فارس و دریای عمان می باشد. به منظور الگوی بهره برداری مناسب از ذخایر این گونه نیاز است که برخی شاخص های پویایی شناسی جمعیت آن دائماً مورد بررسی و سنجش قرار گیرد. اطلاعات مورد نظر به صورت تصادفی ساده از سه تخلیه گاه عمده اصلی بندرجاسک، بندرعباس و بندرلنگه در استان هرمزگان از فروردین تا اسفند 1394 جمع آوری شدند. میانگین طول چنگالی ماهیان زرده 60/1 سانتی متر بود. مقادیر aوb در رابطه طول- وزن به ترتیب 5-10× 12/ 2 و 2/84 به دست آمدند که بیان کننده رشد آلومتریک این گونه می باشد. پیراسنجه های رشد L∞ ،K و t0 به ترتیب 90/9 سانتی متر، 0/78 بر سال و 0/15- سال به دست آمدند. طول چنگالی ماهی زرده در پایان یک سالگی، دوسالگی و سه سالگی به ترتیب 53/8، 73/9 و 83/1 سانتی متر بود. شاخص رشد برابر با 8/77 محاسبه شد که با سایر مطالعات صورت گرفته مطابقت داشت. مرگ و میر کل، طبیعی و صیادی به ترتیب برابر با 2/49، 0/85 و 1/64 بر سال بودند. مقادیر Fopt و Flimit به عنوان نقاط مرجع زیستی به ترتیب 0/43 و 0/56 بر سال محاسبه شدند. نسبت بهره برداری برای این گونه 0/66 تخمین زده شد. نتایج این بررسی نشان داد که برداشت از ذخایر ماهی زرده در استان هرمزگان بیش از حد بوده و پیشنهاد می شود در جهت مدیریت صید این گونه و با کاهش تلاش صید اقدامات لازم صورت گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_105071_4683d821b9965f80784285b429d23174.pdf
2020-03-20
133
142
10.22034/aej.2020.105071
ماهی زرده
پیراسنجه های رشد
مرگ و میر
نقاط مرجع زیستی
استان هرمزگان (خلیج فارس)
محمد
درویشی
m.darvishi70@yahoo.com
1
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسۀ تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
سیامک
بهزادی
s_behzady@yahoo.com
2
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسۀ تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
بهنام
دقوقی
b.daghooghi@gmail.com
3
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسۀ تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
علی
سالارپوری
salarpouri@gmail.com
4
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسۀ تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، م.، 1385. مطالعات مستمرهیدرولوژی وهیدروبیولوژی خلیج فارس وتنگه هرمز (آب های محدوده استان هرمزگان). مؤسسه تحقیقات شیلات ایران (موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور). تهران. 154 صفحه.
1
درویشی، م.، 1395. ارزیابی توسعه صید سنتی ماهی هوور (Thunnus tonggol) با استفاده از شاخص های دینامیک جمعیت در خلیج فارس و دریای عمان (آبهای استان هرمزگان). پایان نامه دکتری. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 192 صفحه.
2
درویشی، م.؛ بهزادی، س. و سالارپور، ع.، 1383. برخی از خصوصیات پویایی جمعیت ماهی زرده (Euthynnus affinis)، در آب های استان هرمزگان. مجله پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. سال 4، شماره 60، صفحات 70 تا 75.
3
صادقی، ح.ر.؛ اکبرزاده، آ.؛ سورینژاد، ا. و نوری، ا.، 1395. وﯾﮋﮔﯽﻫﺎی رﺷﺪ و ﺗﻨﻮع ﻓﻨﻮﺗﯿﭙﯽ ﻣﺎﻫﯽ زرده (affinisEuthynnus)، در ﺧﻠﯿﺞ ﻓﺎرس (آب های هرمزگان). ﻧﺸﺮﯾﻪ ﭘﮋوﻫﺶ ﻫﺎی ﻣﺎﻫﯽ ﺷﻨﺎﺳﯽ ﮐﺎرﺑﺮدی، سال چهارم، شماره ،4 صفحات 25 تا 38.
4
Ahmed, Q.; Bilgin, S. and Bat, L., 2016. Length based growth estimation of most commercially important Scombridae from offshore water of Pakistan Coast in the Arabian Sea. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 16, pp: 155-167.
5
Al-Zibdah, M. and Odat, N., 2007. Fishery, status, growth, reproduction biology and feeding habits of two Scombroid fish from the Gulf of Aquaba, Red Sea. Lebanese Science Journal. Vol. 8, pp: 3-20.
6
Azpeitia, R.M.; López-Martínez, J.; Rábago-Quiroz, C.H.; Nevárez-Martínez, M.O. and Herrera-Valdivia, E., 2013. Growth and mortality rates of Pseudupeneus grandisquamis and Urobatis halleri bycatch species in the shrimp fishery. Hidrobiológica. Vol. 23, pp: 386-393.
7
Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology, South Asian publishers. 175 p.
8
Cadima, E.L., 2003. Fish Stock Assessment Manual. FAO Fisheries Technical Paper No. 393. Rome. 161 p.
9
Collette, B.B. and Nauen, C.E., 1983. FAO Species Catalogue. Vol. 2. Scombrids of the world. An annotated and illustrated catalogue of tunas, mackerels, bonitos and related species known to date. Rome: FAO. FAO Fish. Synop. 137 p.
10
Froese, R., 2006. Cube law, condition factor and weight-length relationships: history, meta-analysis and recommendations. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, pp: 241–253.
11
Froese, R. and Binohlan, C., 2000. Empirical relatonships to estimate asymptotic length, length at first maturity and length at maximum yield per recruit in fishes, with a simple method to evaluate length frequency data Journal of Fish Biology. Vol. 56, pp: 758-773.
12
Froese, R.; Tsikliras, A.C. and Stergious, K.I., 2011. Editorial note on weight-length relations of fishes. Acta Ichthyologica et Piscatoria. Vol. 41, pp: 261-263.
13
Gayanilo, F.C.; Sparre, P. and Pauly, D., 1996. The FAO ICLARM Stock Assessment Tools (FiSAT), User's guide. (Fisheries). FAO Computerized Information Series. No. 8. Rome, Italy. 126 p.
14
Ghosh, S.; Pillai, N.G.K. and Dhokia, H.K., 2010. Fishery, population characteristics and yield estimates of coastal tunas at Veraval. Indian Journal of Fisheries. Vol. 57, pp: 7-13.
15
Haddon, M., 2011. Modelling and QuantitativeMethods in Fisheries.' 2nd edn, Chapman and Hall. 449 p.
16
Hoeing, J.M.; Csirke, M.J.; Sanders, A.; Abella, M.G.; Andreoli, D.;Levi, S., Ragonese, M.; Al-Shoushani, M. and El-musa, M., 1987. Data Acquisition for Length-Based Stock Assessment: Report of Working Group. Vol. 4, pp: 343-352.
17
IOTC. 2015. Assessment of longtail tuna using data poor catch-based methods (IOTC-2015 WPNT05-22), Retrieved August 12, 2016. http://www.iotc.org.
18
Jenings, S.; Kaiser, M.J. and Reynolds, D., 2001. Marine fish ecology. Blackwell Science. Ltd. 417 p.
19
Johnson, M.G. and Tamatamah, R.A., 2013. Length frequency distribution, mortality rate and reproductive biology of kawakawa (Euthynnus affinis-Cantor, 1849) in the Coastal Waters of Tanzania. Pakistan Journal of Biological Sciences. Vol. 16, pp: 1270-1278.
20
Kasim, H. M. and Abdussamad, E. M., 2003. Stock assessment of coastal tunas along the east coast of India. In: Somvanshi, V. S., Vargh ese, S. and Bhargava, A. K. (Eds), Proc. Tuna Meet 2003. pp: 42-53.
21
Kaymaram, F. and Darvishi, M., 2012. Growth and mortality parameters of Euthynnus affinis in the northern part of the Persian Gulf and Oman Sea. Indian Ocean Tuna Commission (IOTC), Working Party on Neritic Tunas (WPNT), IOTC-2012-WPNT02-14. pp: 1-14.
22
Khan, M. Z., 2004. Age and growth, mortality and stock assessment of Euthynnus affinis from Maharashtra waters. Indian Journal of Fisheries. Vol. 51, pp: 209-213.
23
King, M., 2010. Fisheries biology assessment and management fishing. Second Edition. Blackwell publishing Ltd. 382 p.
24
Mudumala, V.K.; Farejiya, M.K.; Mali, K.S.; Rao, K.R.; Ankush, P.S. and Anandhan, S., 2018. Investigations on the age, growth and mortality parameters of Kawakawa, Euthynnus affinis (Cantor, 1849) from the North west coast of India. International Journal of Aquatic Biology. Vol. 6, pp: 21-24.
25
Patterson, K., 1992. Fisheries for pelagic species: An empirical approach to management targets. Review in Fish Biology and Fisheries. Vol. 2, pp: 321-338.
26
Pauly, D., 1980. On the interrelationships between natural mortality, growth parameters, and mean environmental temperature in 175 fish stocks. Journal Du Conseil International Pour L'Exploration De La Mer. Vol. 39, pp: 175-192.
27
Pauly, D., 1984. Fish population dynamics in tropical waters: A manual for use with programmable calculators, ICLARM Stud. Rev. Vol. 8, pp: 325-356.
28
Pauly, D., 1987. A review of the ELEFAN system for analysis of length-frequency data in fish and aquatic invertebrates. pp: 7-34. In D. Pauly and G. R. Morgan (eds). Length-based methods in Fisheries research. ICLARM conference proceedings. 468 p.
29
Pauly, D. and Morgan, G.R., 1987. Length-Based method in fisheries research. International Center for Living Aquatic Resources Management.Kuwait Institute for Science Research. 468 p.
30
Pauly D. and Munro, J., 1984. Once more on the comparision of growth in fish and invertebrates, Fishbyte. Vol. 2, 21 p.
31
Pillai, P.P.; Pillai, N.G.; Sathianandan, T.V. and Kesavan Elaythu, M.N.K., 1993. Fishery Biology and stock assessment of Scomberomorous commerson (lacepede) from the South West Coast in India. IPTP Collective. Vol. 8, pp: 56-61.
32
Pitcher, T.J., 2002. A bumpy old road: Size-base methods in fisheries assessment. In: Hand book of Fish Biology and Fisheries: Vol.2, (Fisheries. Hart, P.J.B. and Reynolds, J.D.,). Blackwell Publishing, Oxford. 210 p.
33
Rohit, P.; Chellappan, A.; Abdusssamad, E.M.; Joshi, K.K.; Koya, K.P.S.; Sivadas, M.; Ghosh, S.; Rathinam, A.M.M.; Kemparaju, S.; Dhokia, H.K.; Prakasan, D. and Beni, N., 2012. Fishery and bionomics of the little tuna, Euthynnus affinis (Cantor, 1849) exploited from Indian waters. Indian Journal of Fisheries. Vol. 59, pp: 33- 42.
34
Sparre, P. and Venema, S.C., 1992. Introduction to tropical fish Stock Assessment. Part 1 Manual, FAO, Rome, Italy. 375 p.
35
Sulistyaningsih, R.K.; Jatmiko, I. and Wujdi, A., 2014. Length frequency distribution and population parameters of kawakawa (Euthynnus affinis-Cantor, 1849) caught by purse seine in the Indian Ocean (a Case Study in Northwest Sumatera IFMA 572. Vol. 20, pp: 1-14.
36
Taghavi, M.S.A.; Hashemi, S.A. and Kochanian, P., 2010. Population biology and assessment of Kawakawa (Euthynnus affinis) in Coastal Waters of the Persian Gulf and Sea of Oman (Hormozgan Province). Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 9, pp: 315-326.
37
Weatherley, A.H., 1972. Growth and ecology of fish populations. Academic Press, London. 258 p.
38
Yesaki, M., 1989. Estimate of age and growth of Kawa kawa (Euthynnus affinis) longtail tuna (Thunnus tonggol) and frigate tuna (Auxis thazard) from the Gulf of Thailand based on length data. Ino-pac. Tuna, Dev. Mgt. Programme. ITPT/89/GEN. Vol. 17, pp: 94-108.
39
Yesaki, M., 1989. Estimates of age and growth of kawakawa (Euthynnus affinis), longtail tuna (Thunnus tonggol) and frigate tuna (Auxis thazard) from the Gulf of Thailand based on length data. Indo-Pacific Tuna Development and Management Programme, IPTP/89/GEN. Vol. 17, pp: 94-108.
40
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی رابطه طول و وزن، نسبت جنسی و شاخص وضعیت ماهی یال اسبی سر بزرگ Trichiurus lepturus در دریای عمان (سیستان و بلوچستان)
رابطه طول و وزن، نسبت جنسی و شاخص وضعیت ماهی یال اسبی سربزرگ Trichiurus Lepturus از مهر 1393 تا شهریور 1394 در سواحل استان سیستان و بلوچستان در دریای عمان بررسی گردید. در مجموع تعداد 283 نمونه به صورت تصادفی در طول مدت تحقیق جمع آوری گردید. نمونه ها پس از تعیین جنسیت در گروه های طولی مختلف تقسیم بندی شدند. در نمونه های مورد مطالعه، 42 درصد نر، 58 درصد ماده و نسبت جنسی ماده به نر در این بررسی (1/37:1) محاسبه گردید. بیش ترین و کم ترین میزان طول کل به ترتیب 115 سانتی متر و 49 سانتی متر و بیش ترین و کم ترین میزان وزن کل به ترتیب 1000 گرم و 180 گرم در طول دوره مطالعه به دست آمد. رابطه طول کل- وزن برای مجموع جمعیت به صورتW=0.048TL2.67 و با ضریب همبستگی 0/919 محاسبه شد. رابطه طول کل و وزن در جنس نرW=0.066 TL 2.410 با ضریب همبستگی 0/945 و در جنس ماده به صورت W = 0.0087TL 2.301 با ضریب همبستگی 0/925 تخمین زده شد. نتایج آزمون t-test وجود اختلاف معنی داری را بین مقادیر b به دست آمده برای جنس نر، ماده و مجموع جمعیت با عدد 3 نشان داد و بنابراین دارای رشد ناهمگون است. میزان شاخص وضعیت برای ماهی یال اسبی در آب های دریای عمان 1/25 محاسبه شد. وضعیت از اسفند تا اواسط مرداد روند کاهشی داشته است وسپس به تدریج افزایش یافته است و به حداکثر میزان خود در پاییز رسیده است.
http://www.aejournal.ir/article_105083_9a90153fa35ba1effd47471a4c95dd3d.pdf
2020-03-20
143
148
10.22034/aej.2020.105083
ماهی یال اسبی سر بزرگ
شاخص وضعیت
رابطه طول و وزن
دریای عمان
محمدرضا
میرزائی
mirzaei.mr@gmail.com
1
مرکز تحقیقات شیلاتی آب های دور ، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، چابهار، ایران
LEAD_AUTHOR
بیژن
آژنگ
bajang1980@yahoo.com
2
مرکز تحقیقات شیلاتی آب های دور ، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، چابهار، ایران
AUTHOR
سارا
کاظمی
sarakazemi.kh@gmail.com
3
اداره کل شیلات استان سیستان وبلوچستان، چابهار، ایران
AUTHOR
تقوی مطلق، س.ا.، 1390. پویایی شناسی جمعیت و زیست شناسی ماهی یال اسبی در سواحل ایرانی خلیج فارس و دریای عمان. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 62 صفحه.
1
رئیسی، ه.، 1390. ارزیابی ذخایر ماهی یال اسبی بزرگ و تعیین ترکیب صید ضمنی در ترالهای صید این گونه درآب های بوشهر و هرمزگان. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 20 صفحه.
2
ستاری، م.؛ شاهسونی، د. و شفیعی. ش.، 1382. ماهی شناسی سیستماتیک. انتشارات حق شناس. 502 صفحه.
3
کمالی ع.؛ دهقانی، ر.؛ بهزادی، س.؛ سالارپور، ع.؛ درویشی، م. و ولی نسب. ت.، 1382. بررسی وضعیت ذخایر ماهیان یال اسبی در آب های استان هرمزگان. موسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران. تهران. 74صفحه.
4
ولی نسب، ت.؛ دهقانی، ر.؛ کمالی، ع. و خورشیدیان، ک.،1384. گزارش نهایی تعیین میزان توده زنده کفزیان خلیج فارس و دریای عمان به روش مساحت جاروب شده. سازمان تحقیقات و آموزش کشاورزی. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 100 صفحه.
5
Barbosa, S.C.; Costa, M.F.; Barletta, M.; Dantas, D.V.; Kehrig, H.A. and Malm, O., 2011. Total mercury in the fish Trichiurus lepturus from a tropical estuary in relation to length, weight, and season. Neotropical Ichthyology. Vol. 9, No. 1, pp: 183-190.
6
Biswas, S., 1993. Manual of methods in fish biology: South Asian Publishers. 190 p.
7
Chiou, W.D.; Chen, C.Y.; Wang, C.M. and Chen, C.T., 2006. Food and feeding habits of ribbonfish Trichiurus lepturus in coastal waters of south‐western Taiwan. Fisheries Science. Vol. 72, No. 2, pp: 373-381.
8
Cotter, A. and Pilling, G., 2007. Landings, logbooks and observer surveys: improving the protocols for sampling commercial fisheries. Fish and Fisheries. Vol. 8, No. 2, pp: 123-152.
9
Farzana, Y.; Tabassum, Q.S. and Naeema, E., 2012. Length Weight Relationship and Condition Factor of Trichiurus lepturus (Pisces: Trichiuridae) from Karachi Coast, Pakistan Karachi University Journal of Science. Vol. 40, pp: 12-19.
10
Jones, R.; Petrell, R. and Pauly, D., 1999. Using modified length–weight relationships to assess the condition of fish. Aquacultural engineering. Vol. 20, No. 4, pp: 261-276.
11
King, M., 1995. Fisheries biology assessment and management . Fishing News Book. 340 p.
12
Martins, A.S. and Haimovici, M., 1997. Distribution, abundance and biological interactions of the cutlassfish Trichiurus lepturus in the southern Brazil subtropical convergence ecosystem. Fisheries Research. Vol. 30, No. 3, pp: 217-227.
13
Martins, A.; Haimovici, M. and Palacios, R., 2005. Diet and feeding of the cutlassfish Trichiurus lepturus in the Subtropical Convergence Ecosystem of southern Brazil. Marine Biological Association of the United Kingdom. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. Vol. 85, No. 5, pp: 1223-1229.
14
Narasimham, K., 1970. On the length-weight relationship and relative condition in Trichiurus lepturus Linnaeus. Indian Journal of Fisheries. Vol. 17, pp: 90-96.
15
Pauly, D., 1983. Some simple methods for the assessment of tropical fish stocks: FAO Fisheries Technical Paper. 55 p.
16
Rao, T.A.; Lal Mohan, R.; Chakraborty, S.; Murty, V.S.; Nair, K.; Vivekanandan, E. and Raje, S., 1992. Stock assessment of sciaenid resources of India. Indian Journal of Fisheries. Vol. 39, No. 1-2, pp: 85-103.
17
Taghavi Motlagh, S.A. and Ghodrati Shojaei, M., 2017. Fishery management based on relative yield-per-recruit model for the Largehead Hairtail (Trichiurus lepturus) stocks in the Persian Gulf and Oman Sea. Iranian Scientific Fisheries Journal. Vol. 26, No. 6, pp: 93-102.
18
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی رژیم غذایی کفشک تیزدندان (Psettodes erumei) در سواحل استان سیستان و بلوچستان
مطالعه رژیم غذایی ماهی کفشک تیز دندان Psettodes erumei در سواحل استان سیستان و بلوچستان در دریای عمان با بررسی 173 نمونه در زمان های قبل از مانسون و بعد از مانسون در سال 1390 صورت پذیرفت. در این راستا فاکتورهای مربوط به تغذیه مانند تعیین شاخص ارجحیت غذایی ، خالی و پر بودن معده و طول نسبی روده بررسی گردید. شاخص خالی بودن معده (CV) در کل نمونه های بررسی شده نشان داد که این ماهی، گونه ای با تغذیه متوسط می باشد. هم چنین با بررسی این شاخص به تفکیک زمان مشخص گردید که این گونه قبل از مانسون پرخور و بعد از مانسون دارای تغذیه متوسط می باشد. شاخص طول نسبی روده (RLG) برای این گونه نشان می دهد، ماهی کفشک تیزدندان جزء ماهیان گوشت خوار می باشد و رژیم غذایی آن شامل: ماهی، میگو، خرچنگ، اسکوئیلا، توتیای دریایی، تخم ماهی، کرم و غیره می باشد. شاخص ارجحیت غذایی (FP) برای ماهیان 88% ، سخت پوستان 8% ، نرم تنان 2% و سایر 2% به دست آمد. بنابراین ماهی، به عنوان غذای اصلی کفشک تیز دندان شناخته شد. بررسی رابطه طول – وزن نشان داد که رشد این ماهی با داشتن ضریب رشد (3/26 =b) آلومتریک می باشد. هم چنین نسبت جنسی نر به ماده 1/22 : 0/78 محاسبه گردید.
http://www.aejournal.ir/article_105100_fc45c0af40f587093efd35043644babf.pdf
2020-03-20
149
164
10.22034/aej.2020.105100
کفشک تیز دندان
Psettodes erumei
تغذیه
آب های سیستان و بلوچستان
دریای عمان
اشکان
علی رمجی
ashkan.aliramaji@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، واحد تنکابن، دانشگاه آزاد اسلامی، تنکابن، ایران
AUTHOR
مهدی
محمد علیخانی
m.mohammadalikhani1982@gmail.com
2
باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
اسدی، ه.و دهقانی، ر.، 1375. اطلس ماهیان خلیج فارس و دریای عمان، سازمان تحقیقات و آموزش شیلات ایران، 226 صفحه.
1
اشقلی فراهانی، س.؛ ولی نسب، ت. و کیوان، ا.، 1383. بررسی فراوانی طولی، رابطه طول-وزن و پراکنش کفشک تیز دندان (Psettodes erumei) در آب های دریای عمان. مجله علمی شیلات ایران. دوره 14، شماره 2، صفحات 169 تا 174.
2
دهقانی، ر.، 1382. پایش ذخایر کفزیان آب های استان هرمزگان به روش مساحت جاروب شده، سازمان تحقیقات و آموزش کشاورزی، موسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان. 77 صفحه.
3
شکاری، م.؛ سواری، ا.؛ غفله مرمضی، ج.؛ اسکندری، غ.؛ رونق، م.؛ هاشمی، ا.؛ درویش بسطامی، ک.؛ سینایی، م. و کاشی، م.، 1389. زیست شناسی تولیدمثل و تغذیه میش ماهی (Argyrosomus hololepidotus) در آب های ساحلی استان خوزستان. مجله علمی شیلات ایران. دوره 19، شماره 2، صفحات 67 تا 76 .
4
حسین زاده صحافی، ه.؛ دقوقی، ب. و رامشی، ح.، 1379. اطلس نرم تنان خلیج فارس. انتشارات موسسه تحقیقات شیلات ایران. 208 صفحه.
5
حسین زاده صحافی، ه.، 1380. بیولوژی تولیدمثل ماهی (با تاکید بر ماهی های ایران). موسسه انتشارات جهاد دانشگاهی.تهران، ایران.
6
صادقی. ن.، 1380. ویژگی های زیستی و ریخت شناسی ماهیان جنوب ایران (خلیج فارس و دریای عمان). انتشارات نقش مهر. 440 صفحه.
7
کمالی، ع.، 1380. زیست شناسی تولیدمثل ماهی سرخو معمولی Lutjanus johni در آب های هرمزگان. مجله علمی شیلات ایران. دوره 10، شماره 1، صفحات 73 تا 90.
8
کوشا، آ.، 1375. شنـاسایی گونه های راسته کفشک ماهیان Pleuronecti formis و برخی خصوصیات زیستی گونه Cynoglossus dubius در سواحل دریای عمان. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال. 97 صفحه.
9
Abduraiman, K.P.; Harishnayak, T.; zacharia, P.U. and Mohamed, K.S., 2004. Length Weight relationships of commercially important marine fishes and shellfishes of the Southern Coast of Kernataka, Indian of World fish. Vol. 27, pp: 9-14.
10
Al-Hussainy, A.H., 1949. On the functional morphology of the alimentary tract of some fishes in relation to difference in the feeding habits. Quart. J. Micr. Sci. Vol. 9, No. 2, pp: 113-1120.
11
Bagenal, T.B., 1978. Aspects of fish fecundity, In: Gerking, SD (ed). Methods of Assessment of Ecology of Freshwater Fish Production. Blackwell Scientific Publications, London. pp: 75-101.
12
Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology. South Asian Publishers Pvt. Ltd. India. 157 p.
13
Carmelo, R.J., 1996. Identifying marine phytoplankton. Academic Press. 584 p.
14
Carpenter, K.E.; Krupp, F.; Jones, D.A. and Zajonz, U., 1997. Living marine resources of Kuwait, eastern Saudi Arabia, Bahrain, Qatar, and the United Arab Emirates. FAO species identification field guide for fishery purposes. plates. Rome, FAO. 293 p.
15
Das, M. and Mishra, B., 1989.Length-Weight relationship of certain fishes. Madagascar. Vol. 22, pp: 139-141.
16
De Groot, M., 1969. Digestive system and sensorial factors in relation to the feeding behavior of flat fish (Pleuronectiformes). J. cons. Perm. Hnt. Explor. Vol. 32, pp: 384-394.
17
Devadoss, P. and Pillai, N., 1973. Observation on the food of juveniles of Psettodes erumei (Bloch). Indian J. Fish. Vol. 20, No. 2, pp: 664-667.
18
Edwards, R.R.C. and Shaher, S., 1991. The biometric of marine fishes from the G Aden. Fish byte. Vol. 9, No. 2, pp: 27-29.
19
Euzen, O., 1978. Food habit and diet composition of some fish Kuwait. Kuwait Bulletin of marine science. Vol. 9, pp: 65-85.
20
Fauchald, K., 1997. The polychaete worms. Definitions and keys to the orders, families and genera. 188 p.
21
Hannoon, B. and Joiris, C., 1989. A seasonal analysis of the Southern North Sea Ecosystem. Ecology. Vol. 70, pp: 1916-1934.
22
Hussain, N.A. and Abdullah, M.A.S., 1997. The length weight relationship, spawning season and food habits of six commercial fishes in Kuwaiti waters. Indian Journal of Fisheries. Vol. 24, No. 1-2, pp: 181-194.
23
Hyslop, E.J., 1980. Stomach contents analysis-a review of methods and their application. Journal of Fish Biology. Vol. 17, pp: 411-429.
24
Le-Cren, C.P., 1951. Length-Weight relationship and seasonal cycle in gonad weight and condition in the Perch (Perca fluviatilis). Journal of Animal Ecology. Vol. 20, No. 2, pp: 201-219.
25
Livingston, M.E., 2011. Food resource use among five flatfish species (Pleuronectiformes) in Wellington Harbour, New Zeland, New Zeland Journal of Marine and freshwater research. Vol. 21, No. 2, pp: 281-293.
26
Luczkovich, J.J.; Ward, G.P.; Johnson, J.C.; Christian, R.R.; Baird, D.; Neskles, H. and Rizzo, W.M., 2002. Determining the trophic guilds of fishes and macro invertebrates in a seagrass food web. Estuaries. Vol. 25, pp: 1143-1163.
27
McCracken, F.D., 1963. Seasonal movements of the winter flounder Pseudopleuronectes americanus (Walbaum), in the Atlantic Coast. Journal of the Fisheries Research Board of Canada. Vol. 20, pp: 551-586.
28
Nath, S., 1996. Studies on the bioecology of fishes of jammu Province (Jammu and Kashmir state) India. Rec. Adv. Fish ecol. Limm. Eco conserv. Vol. 5, pp: 59-106.
29
Pauly, D., 1984. Fish population dynamics in tropical waters: a manual for use with programmable calculators, ICLARM. 325 p.
30
Polovina, J.J. and Ralston, S., 1987. Tropical snapper and grouper biology and fisheries management. Ocean Resour. Mar. Policy ser. Boulder Co. Westview Press. USA. 656 P.
31
Rajaguru, A., 1992. Biology of two co-occuring tongue fishes, cynoglossus arel and C.lida (Pleuronectiformes: cyanoglossidae), from India waters. Fish. Bull. Vol. 90, No. 2, pp: 325-367.
32
Sandovy, Y.; Rosario, A. and Roman, A., 1994. Reproduction hn an aggregating grouper, the red hind, Epinephelus quttatus. Biol. Fish. Vol. 41, pp: 269-286.
33
Smith, M.M. and Heemstra, P.C., 1986. Smith is Sea Fishes. Macmillan South Africa, Johannesburg. 1047 p.
34
Tesch, F.W., 1968. Age and Growth. In: Methods for Assessment of Fish Production in Freshwaters, Ricker, W.E., (Ed.). Blackwell Scientific Publications, Oxford, UK. pp: 93-123.
35
Venkatra, M. and Ramanatham, N., 1994. Manual of fish biology. Published by Raju -20. Primlani Oxford. New Delhi, Bombay. 830 p.
36
Wolfgag, S., 1986. Marine fauna and flora of Bermuda. A systematic guide to the identification of marine organisms. 742 p.
37
www.fishbase.org
38
www. FAO.org
39
ORIGINAL_ARTICLE
فاکتورهای محیطی موثر بر انتخاب زیستگاه در سه گونه غضروف ماهیان در آب های ایرانی دریای عمان
مطالعه حاضر با هدف بررسی اثر عوامل محیطی بر پراکنش و انتخاب زیستگاه در سه گونه همزیست از ماهیان غضروفی در دریای عمان انجام شد. نمونه برداری از مهرماه لغایت آبان ماه 1396 از نوار شمالی دریای عمان به وسیله کشتی ترال کف کلاس فردوس انجام شد. فاکتورهای محیطی به وسیله CTD ثبت گردید و جهت تعیین فاکتورهای تاثیرگذار بر انتخاب زیستگاه در گونههای مورد مطالعه از مدل GAM استفاده گردید. نتایج نشان داد که عامل محیطی کلروفیل a بیش ترین تاثیر در انتخاب زیستگاه در گونه Iago omanensis دارد. در دیگر سو، فراوانی گونه Rhinobatos annandalei ارتباط معنی داری با فاکتورهای محیطی اکسیژن محلول، کلروفیل a، درجه حرارت و هدایت الکتریکی داشت. از طرفی، فاکتورهای محیطی درجه حرارت و هدایت الکتریکی بر پراکنش گونه Torpedo sinuspersici نقش مهمی داشتند. نتایج مطالعه حاضر، علم و شناخت را از اکولوژی پراکنش ماهیان غضروفی همزیست در دریای عمان را بهبود بخشید که می تواند در معرفی مکان های با احتمال حضور این گونه ها و تجزیه و تحلیل مکانی آن ها برای سایر محققین علاقه مند و مدیریت شیلاتی در آینده مورد استفاده قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_105117_f72fe33bc8ffc80d1f54b8454a606725.pdf
2020-03-20
165
172
10.22034/aej.2020.105117
ماهیان غضروفی
گونههای شاخص
انتخاب زیستگاه
فاکتورهای محیطی
دریای عمان
یاسین
میربلوچ زهی
yasin.mirbalooch1989@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سیدعلی اکبر
هدایتی
marinebiology1@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
محمدرضا
میرزائی
mirzaei.mr@gmail.com
3
مرکز تحقیقات شیلاتی آب های دور ، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، چابهار، ایران
AUTHOR
علی رضا
راستگو
rastgoo.alireza@yahoo.com
4
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
راستگو، ع. ر.، ولی نسب، ت. 1396. روابط غذایی بین سه گونه از ماهیان غضروفی همزیست در دریای عمان: با تاکید بر مجزا بودن منابع غذایی. مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 7، شماره 2، صفحات 76 تا 86.
1
Andrews, K.S.; Williams, G.D. and Levin, P.S., 2010. Seasonal and ontogenetic changes in movement patterns of sixgill sharks. PLoS One. Vol. 5, e12549.
2
Barria, C.; Coll, M. and Navarro, J., 2015. Unravelling the ecological role and trophic relationships of uncommon and threatened elasmobranchs in the western Mediterranean Sea. Mar Ecol Prog Ser. Vol. 539, pp: 225-240.
3
Bernal, D.; Carlson, J.K.; Goldman, K.J. and Lowe, C.G., 2012. Energetics, metabolism, and endothermy in sharks and rays. In: Carrier, J.C.; Musick, J.A. and Heithaus, M.R., (eds) Biology of sharks and their relatives, 2nd edn. CRC Press, BocaRaton. pp: 211-237.
4
Bornatowski, H.; Wosnick, N.; Do Carmo, W.P.D.; Corrêa, M.F.M. and Abilhoa, V., 2014. Feeding comparisons of four batoids (Elasmobranchii) in coastal waters of southern Brazil. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. pp: 1-9.
5
Collins, A.; Heupel, M. and Motta, P., 2007. Residence and movement patterns of cownose rays Rhinoptera bonasus within a south‐west Florida estuary. Journal of Fish Biology. Vol. 71, pp: 1159-1178.
6
Cortés, F.; Waessle, J.A.; Massa, A.M. and Hoyle, S.D., 2017. Aspects of the porbeagle shark bycatch in the Argentinean surimi fleet operating in the Southwestern Atlantic Ocean (50–57º S) during 2006.
7
Craig, J.; Gillikin, P.; Magelnicki, M. and May, L., 2010. Habitat use of cownose rays (Rhinoptera bonasus) in a highly productive, hypoxic continental shelf ecosystem. Fisheries Oceanography. Vol. 19, pp: 301-317.
8
Di Santo, V. and Bennett, W.A., 2011. Is post-feeding thermotaxis advantageous in elasmobranch fishes? Journal of Fish Biology. Vol. 78, pp: 195-207.
9
Dickson, K.A. and Graham, J.B., 2004. Evolution and consequences of endothermy in fishes. Physiological and Biochemical Zoology. Vol. 77, No. 6, pp: 998-1018.
10
Donley, J.M.; Shadwick, R.E.; Sepulveda, C.A. and Syme, D.A., 2007. Thermal dependence of contractile properties of the aerobic locomotor muscle in the leopard shark and shortfin mako shark. Journal of Experimental Biology. Vol. 210, No. 7, pp: 1194-1203.
11
Dulvy, N.K.; Fowler, S.L.; Musick, J.A.; Cavanagh, R.D.; Kyne, P.M.; Harrison, L.R.; Carlson, J.K.; Davidson, L.N.; Fordham, S.V. and Francis, M.P., 2014. Extinction risk and conservation of the world’s sharks and rays. elife. Vol. 3, e00590.
12
Edgar, G.J.; Barrett, N.S.; Graddon, D.J. and Last, P.R., 2000. The conservation significance of estuaries: a classification of Tasmanian estuaries using ecological, physical and demographic attributes as a case study. Biological Conservation. Vol. 92, pp: 383-397.
13
Espinoza, M.; Farrugia, T.J. and Lowe, C.G., 2011. Habitat use, movements and site fidelity of the gray smooth hound shark (Mustelus californicus Gill 1863) in a newly restored southern California estuary. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 401, pp: 63-74.
14
Furness, R.W. and Camphuysen, K., 1997. Seabirds as monitors of the marine environment. iceS Journal of marine Science. Vol. 54, pp: 726-737.
15
Gómez-Salazar, C.; Coll, M. and Whitehead, H., 2012. River dolphins as indicators of ecosystem degradation in large tropical rivers. Ecological Indicators. Vol. 23, pp:19-26.
16
Heithaus, M.R., 2001. The biology of tiger sharks, Galeocerdo cuvier, in Shark Bay, Western Australia: sex ratio, size distribution, diet, and seasonal changes in catch rates. Environmental Biology of Fishes. Vol. 61, pp: 25-36.
17
Heithaus, M.; Dill, L.; Marshall, G. and Buhleier, B., 2002. Habitat use and foraging behavior of tiger sharks (Galeocerdo cuvier) in a seagrass ecosystem. Marine Biology. Vol. 140, pp: 237-248.
18
Heithaus, M.R.; Delius, B.K.; Wirsing, A.J. and Dunphy Daly, M.M., 2009. Physical factors influencing the distribution of a top predator in a subtropical oligotrophic estuary. Limnology & Oceanography. Vol. 54, pp: 472-482.
19
Heupel, M. and Hueter, R., 2002. Importance of prey density in relation to the movement patterns of juvenile blacktip sharks within a coastal nursery area. Marine and Freshwater Research. Vol. 53, pp: 543-550.
20
Hight, B.V. and Lowe, C.G., 2007. Elevated body temperatures of adult female leopard sharks, while aggregating in shallow nearshore embayments: evidence for behavioral thermoregulation? Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 352, pp: 114-128.
21
Hoisington, G. and Lowe, C.G., 2005. Abundance and distribution of the round stingray, Urobatis halleri, near a heated effluent outfall. Marine Environmental Research. Vol. 60, pp: 437-453.
22
Jaine, F.R.; Couturier, L.I.; Weeks, S.J.; Townsend, K.A.; Bennett, M.B.; Fiora, K. and Richardson, A.J., 2012. When giants turn up: sighting trends, environmental influences and habitat use of the manta ray Manta alfredi at a coral reef. PLoS One. Vol. 7, e46170.
23
Jirik, K. and Lowe, C., 2012. An elasmobranch maternity ward: female round stingrays Urobatis halleri use warm, restored estuarine habitat during gestation. Journal of Fish Biology. Vol. 80, No. 5, pp: 1227-1245.
24
Jorgensen, S.J.; Klimley, A.P. and Muhlia‐Melo, A.F., 2009. Scalloped hammerhead shark Sphyrna lewini, utilizes deep‐water, hypoxic zone in the Gulf of California. Journal of Fish Biology. Vol. 74, pp: 1682-1687.
25
Kendall, V.J. and Haedrich, R.L., 2006. Species richness in Atlantic deep-sea fishes assessed in terms of the mid-domain effect and Rapoport's rule. Deep Sea Research Part I: Oceanographic Research Papers. Vol. 53, pp: 506-515.
26
Knip, D.M.; Heupel, M.R. and Simpfendorfer, C.A., 2010. Sharks in nearshore environments: models, importance, and consequences. Marine Ecology Progress Series. Vol. 402, pp: 1-11.
27
Lotze, H.K.; Lenihan, H.S.; Bourque, B.J.; Bradbury, R.H.; Cooke, R.G.; Kay, M.C.; Kidwell, S.M.; Kirby, M.X.; Peterson, C.H. and Jackson, J.B., 2006. Depletion, degradation, and recovery potential of estuaries and coastal seas. Science. Vol. 312, pp: 1806-1809.
28
Matern, S.A.; Cech, J.J. and Hopkins, T.E., 2000. Diel movements of bat rays, Myliobatis californica, in Tomales Bay, California: evidence for behavioural thermoregulation. Environmental Biology of Fishes. Vol. 58, pp: 173-182.
29
Metcheva, R.; Yurukova, L.; Teodorova, S. and Nikolova, E., 2006. The penguin feathers as bioindicator of Antarctica environmental state. Science of the Total Environment. Vol. 362, pp: 259-265.
30
Navarro, J.; Coll, M.; Cardador, L.; Fernández, Á.M. and Bellido, J.M., 2015. The relative roles of the environment, human activities and spatial factors in the spatial distribution of marine biodiversity in the Western Mediterranean Sea. Progress in Oceanography. Vol. 131, pp: 126-137.
31
Navarro, J.; Cardador, L.; Fernández, Á.M.; Bellido, J.M. and Coll, M., 2016. Differences in the relative roles of environment, prey availability and human activity in the spatial distribution of two marine mesopredators living in highly exploited ecosystems. Journal of biogeography. Vol. 43, pp: 440-450.
32
Nilsson, G.E. and Renshaw, G.M., 2004. Hypoxic survival strategies in two fishes: extreme anoxia tolerance in the North European crucian carp and natural hypoxic preconditioning in a coral-reef shark. Journal of Experimental Biology. Vol. 207, pp: 3131-3139.
33
Priede, I.G. and Miller, P.I., 2009. A basking shark tracked by satellite together with simultaneous remote sensing II: new analysis reveals orientation to a thermal front. Fisheries Research. Vol. 95, pp: 370-372.
34
Rastgoo, A.R.; Navarro, J. and Valinassab, T., 2018. Comparative diets of sympatric batoid elasmobranchs in the Gulf of Oman. Aquatic Biology. Vol. 27, pp: 35-41.
35
Routley, M.H.; Nilsson, G.E. and Renshaw, G.M., 2002. Exposure to hypoxia primes the respiratory and metabolic responses of the epaulette shark to progressive hypoxia. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology. Vol. 131, pp: 313-321.
36
Salarpouri, A.; Kamrani, E.; Kaymaram, F. and Mahdavi Najafabadi, R., 2018. Essential fish habitats of small pelagic fishes in the north of the Persian Gulf and Oman Sea, Iran. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 17, pp: 74-94.
37
Schlaff, A.M.; Heupel, M.R. and Simpfendorfer, C.A., 2014. Influence of environmental factors on shark and ray movement, behaviour and habitat use: a review. Reviews in Fish Biology and Fisheries. Vol. 24, pp: 1089-1103.
38
Shepard, E.L.; Ahmed, M.Z.; Southall, E.J.; Witt, M.J.; Metcalfe, J.D. and Sims, D.W., 2006. Diel and tidal rhythms in diving behaviour of pelagic sharks identified by signal processing of archival tagging data. Marine Ecology Progress Series. Vol. 328, pp: 205-213.
39
Sims, D.W. and Quayle, V.A., 1998. Selective foraging behaviour of basking sharks on zooplankton in a small-scale front. Nature. Vol. 393, 460 p.
40
Sims, D.W.; Wearmouth, V.J.; Southall, E.J.; Hill, J.M.; Moore, P.; Rawlinson, K.; Hutchinson, N.; Budd, G.C.; Righton, D.; Metcalfe, J.; Nash, J.P. and Morritt, D., 2006. Hunt warm, rest cool: bioenergetic strategy underlying diel vertical migration of a benthic shark. Journal of Animal Ecology. Vol. 75, No. 1, pp: 176-190.
41
Speed, C.W.; Meekan, M.G.; Field, I.C.; McMahon, C.R. and Bradshaw, C.J.A., 2012. Heat seeking sharks: support for behavioural thermoregulation in reef sharks. Marine Ecology Progress Series. Vol. 463, pp: 231-244.
42
Speers-Roesch, B.; Brauner, C.J.; Farrell, A.P.; Hickey, A.J.; Renshaw, G.M.; Wang, Y.S. and Richards, J.G., 2012. Hypoxia tolerance in elasmobranchs. II. Cardiovascular function and tissue metabolic responses during progressive and relative hypoxia exposures. Journal of Experimental Biology. Vol. 215, pp: 103-114.
43
Thums, M.; Meekan, M.; Stevens, J.; Wilson, S. and Polovina, J., 2012. Evidence for behavioural thermoregulation by the world's largest fish. Journal of The Royal Society Interface. Vol. 10, No. 78, rsif20120477.
44
Torres, L.G.; Heithaus, M.R. and Delius, B., 2006. Influence of teleost abundance on the distribution and abundance of sharks in Florida Bay, USA. Hydrobiologia. Vol. 569, pp: 449-455.
45
Webb, P.W.; Cotel, A. and Meadows, L.A., 2010. Waves and eddies: effects on fish behavior and habitat distribution. Fish locomotion: An eco-ethological perspective. pp: 1-39.
46
Wise, G.; Mulvey, J.M. and Renshaw, G.M., 1998. Hypoxia tolerance in the epaulette shark. Journal of Experimental Zoology. Vol. 281, pp: 1-5.
47
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی ترکیب شیمیایی و پروفیل اسیدآمینه لاشه و میزان فعالیت آنزیم های گوارشی ماهی خواجو (Schizothorax pelzami) در کلاسه های طولی مختلف
این مطالعه با هدف بررسی ترکیب شیمیایی لاشه و پروفیل اسیدآمینه لاشه و میزان فعالیت آنزیم های گوارشی ماهی خواجو (Schizothorax pelzami) انجام شد. به این منظور ماهیان خواجو از منطقه شمال شرق ایران صید و پس از آماده سازی نمونه ها، آنالیزهای مربوطه در سه کلاسه طولی (8 تا 12، 12 تا 16 و 16 تا 20 سانتی متر) مختلف انجام گرفت. نتایج آنالیز دادهها نشان داد، با افزایش اندازه ماهیان، میزان پروتئین خام لاشه به طور معنی داری کاهش و میزان چربی خام و خاکستر افزایش یافت (0/05>p). آرژنین و لوسین فراوان ترین و متیونین کم ترین اسیدآمینه موجود در لاشه ماهی خواجوی بودند. با افزایش وزن ماهیان، میزان اسیدهای آمینه لوسین، لیزین، ترئونین و متیونین لاشه روند افزایشی معنی داری را نشان دادند (0/05>p). آنزیم پروتئاز کل بیش ترین میزان فعالیت را در روده میانی داشت و میزان فعالیت آنزیم های پروتئاز کل و لیپاز با افزایش وزن بدن ماهیان روند افزایشی معنی داری را نشان داد (0/05>p). نتایج مطالعه حاضر نشان داد که ماهی خواجو می تواند به عنوان یک گونه با عادت غذایی همه چیزخواری متمایل به گوشت خواری درنظر گرفته شود. اطلاعات مربوط به ترکیب شیمیایی و پروفیل اسیدآمینه لاشه ماهی خواجو می تواند به عنوان الگویی جهت تهیه فرمولاسیون جیره های غذایی استفاده شود.
http://www.aejournal.ir/article_105135_ce2ed516c5200ec567c753c4c5e54a88.pdf
2020-03-20
173
180
10.22034/aej.2020.105135
ماهی خواجو S. pelzami
گونه بومی
کلاسه طولی
لاشه
آنزیم گوارشی
احسان
ابراهیمی
ehsan.ebraahimi@gmail.com
1
گروه شیلات دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
حمیدرضا
احمدنیای مطلق
hamid.ahmadnia@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی و محیطزیست، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران
AUTHOR
امید
صفری
omid_safary@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی و محیطزیست، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، ا.؛ کامرانی، ا.؛ حیدرنژاد، م.س. و صفری، ا.، 1396. اثر نور و دما بر فعالیت حرکتی و رفتار تغذیه ای ماهی خواجو Schizothorax pelzami.رساله دکتری. دانشگاه هرمزگان. بندرعباس. 86 صفحه.
1
اسماعیل زاده، ر.؛ سحری، م، و حمیدی اصفهانی، ز.، 1382. مقایسه ترکیبات غذایی گوشت ماهی سفید (Rutilus frisii kutum) و ماهی علف خوار پرورشی (Ctenopharyngodon idella) و فرآوری ماریناد از آن ها. مجله علمی شیلات. سال 12، شماره 4، صفحات 16 تا 19.
2
پاپهن، ف. و رونق، م.، 1381. بررسی میزان چربی و پروتئین عضلات ماهی شوریده در منطقه هندیجان در فصول مختلف. مجله دامپزشکی. دوره 8، شماره 5، صفحات 75 تا 82.
3
جهانجو، و.، 1390. اثرات سطوح متفاوت پربیوتیک مانان الیگوساکارید جیره غذایی بر شاخص های رشد، تغذیه، نرخ بازماندگی و ترکیب بدن شیزوتراکس زارودنی پرورشی (Schizothorax zarudnyi). پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات. دانشگاه آزاد اسلامی آزادشهر. 128 صفحه.
4
دانش مسگران، م.؛ معینی، م.س.؛ ترکی، م.؛ دستار، ب.؛ خواجه علی، ف.؛ بوجارپور، م. و طباطبایی، ف.، 1378. اسیدهای آمینه در تغذیه دام. انتشارات دانشگاه فردوسی مشهد. مشهد. 444 صفحه.
5
ذبیحی، م.؛ پورکاظمی، م.؛ کاظمی، ر.ا. و کمالی، ا.، 1382. تعیین زمان تخم ریزی و تغییرات چرخه تولیدمثلی هامون ماهی (Shizothorax zarudnyi) بر مبنای شاخص وزنی گناد، شاخص وزنی کبد و شاخص چاقی. مجله علمی شیلات ایران. دوره 12، شماره 4، صفحات 41 تا 56.
6
رضوانی گیل کلایی، س.، 1389. بررسی تکثیر و پرورش ماهی شیزوتراکس زارودنی تا وزن یک گرم در استخر خاکی. موسسه تحقیقات شیلات ایران. شماره پروژه 89141-8910-12-14.
7
رضوی شیرازی،ح.، 1373. تکنولوژی فرآورده های دریایی، اصول نگه داری و عمل آوری. انتشارات شرکت شیلانه. صفحات 31 تا 48.
8
زکی پور رحیم آبادی، ا.؛ ارشدی، ع.؛ زارع، پ. و حیدری، م.ر.، 1388. بررسی مقایسه ای ترکیبات شیمیایی عضله ماهی خواجو (Shizothorax zarudnyi) و انجک (Shizocypris altidorsalis) در فصول مختلف و جنس های مختلف در استان سیستان و بلوچستان. مجله علمی شیلات ایران. دوره 3، شماره 3، صفحات 15 تا 20.
9
صفری، ا.؛ باقری، ج. و ناصری زاده، م.،1393. مطالعه هورمون های استروئیدی جنسی پلاسمای خون ماهیان مولد ماده خواجو (Schizothorax pelzami) در طی فصول سال. مجله تحقیقات دامپزشکی دانشگاه تهران. دوره 69، شماره 4، صفحات 423 تا 430.
10
صفری، ا. و ابراهیمی، ا.، 1397. بررسی امکان تولید جیره غذایی بهینه در ماهی خواجو (Schizothorax pelzami) به عنوان گونه بومی شمال شرق ایران باهدف تولید پایدار در سیستم های پرورشی. طرح پژوهشی دانشگاه فردوسی مشهد. 150 صفحه.
11
عبدلی، ا.؛ رسولی، پ.؛ یزدادن داد بی بالان، ح. و عبدلی، ل.، 1386. بررسی برخی جنبه های اکولوژیکی گونه Shizothorax pelzami از رودخانه لائین سو در شمال شرق ایران. مجله علوم محیطی. دوره 4، شماره 3، صفحات 69 تا 76.
12
قرایی، ا.؛ راهداری، ع.ع. و غفاری، م.، 1390. تکثیر مصنوعی ماهی سفیدک سیستان، Shizothorax zarudnyi با استفاده از هورمون های سنتتیک. مجله علوم و فنون دریایی. دوره 10، شماره 1، صفحات 1 تا 11.
13
Ali, M.; Ighbal, F.; Salam, A.; Iram, S. and Athar, M., 2005. Comparative study of body composition of different fish species from brackish water pond. International Journal of Environment Science and Technology. Vol. 2, No. 3, pp: 229-232.
14
AOAC (Association of Official Analytical Chemists). 2005. Official Methods of Analysis, 18th ed. AOAC International, Maryland, USA.
15
Brown, J.; Helm, M. and Moir, J., 1995. New candidate species for aquaculture. In: Boghen, A.D., (Ed.), ColdWater Aquaculture in Atlantic Canada. 2nd edn. Tribune Press, Sackville, New Brunswick. pp: 341-362.
16
Coad, B.W., 1998. Systematic biodiversity in the fresh water fishes of Iran. Ital. J. Zool. Vol. 65, pp: 101-108.
17
Coad, B.W., 1995. Freshwater fishes of Iran. Acta. Sc. Nat. Brno. Vol. 29, No. 1.
18
Cole, D.J.A., 1978. Amino acid nutrition of the pig. In: Haresign, W. and Lewis, D., (Eds.), Recent Advances in Animal Nutrition. Butterworth, London. pp: 59-72.
19
Evans, D.H., 1998. The physiology of fishes. CRC Press. New York. USA. 519 p.
20
FAO. 2004. FAO Yearbook of fishery statistics 2004 (Vol. 1/2). Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome.
21
Forster, I. and Ogata, H.Y., 1998. Lysine requirement of juvenile Japanese flounder Paralichthys oliaceus and juvenile red sea bream Pagrus major. Aquaculture. Vol. 161, pp: 131-142.
22
Gharaei, A.; Rahdari, A. and Ghaffari, M., 2010. Schizothorax zarudnyi as a potential species for aquaculture. Paper presented in the Aqua 2010, Phuket, Thailand, 22-25 September 2010. pp: 119-120.
23
Gharaei, A.; Rahdari, A. and Ghaffari, M., 2011. Induced Spawning of Schizothorax zarudnyi (Cyprinidae) By Using Synthetic Hormones (Ovaprim and HCG). World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 3, No. 6, pp: 518-522.
24
Harding, D.E.; Allen, O.; Jr, W. and Wilson, R.P., 1977. Sulfur amino acid requirement of channel catfish: L-methionine and L-cystine. Journal of Nutrition. Vol. 107, pp: 2031-2035.
25
Kakade, M.L.; Hoffa, D.E. and Leiner, I.E., 1973. Contribution of trypsin inhibitors to the deleterious effects of unheated soybeans fed to rats. Journal of Nutrition. Vol. 103, pp: 1772-1778.
26
Kim, J.D. and Lall, S.P., 2000. Amino acid composition of whole body tissue of Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus), yellowtail flounder (Pleuronectes ferruginea) and Japanese flounder (Paralichthys olivaceus). Aquaculture. Vol. 187, pp: 376-373.
27
Kuzmina, V.V., 1996. Influence of age on digestive enzyme activity in some freshwater teleosts. Aquaculture. Vol. 148, pp: 25-37.
28
Lan, C.C. and Pan, B.S., 1993. In vitro digestibility simulating the proteolysis of feed protein in midgut gland of grass shrimp (Penaeus monodon). Aquaculture. Vol. 109, pp: 59-70.
29
Mambrini, M. and Kaushik, S.J., 1995. Indispensable amino acid requirements of fish: correspondance between quantitative data and amino acid profiles of tissue proteins. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 11, pp: 240-247.
30
McCafferty, W.P., 1981. Aquatic Entomology. Jones and Bartlett Publishers. U.S.A. 449 p.
31
Mirza, M.R., 1988. A note on the systematic of the genus Schizothoraz Heckel, 1993 (Pisces: Cyprinidae). Pak. J. Zool. Vol. 20, No. 3, pp: 312-314.
32
Moon, H.Y. and Gatlin, D.M., 1991. Total sulfur amino acid requirement of juvenile red drum, Sciaenops ocellatus. Aquaculture. Vol. 95, pp: 97-106.
33
Needham, P.R. and Needham, J.G., 1962. A guide to the study of Fresh-water biology. Holden Day Publisher. U.S.A. 107 p.
34
Nettleton, J.A., 1990. Comparing nutrients in wild and farmed fish. Aquaculture magazine. January/February. pp: 34-41.
35
Pauly, D. and Froese, R., 2001. Fish stocks. In Levin, S.A., (ed.) Encyclopedia of Biodiversity. Academic Press, San Diego. Vol. 1, 144 p.
36
Pennak, R.L., 1953. Fresh water invertebrate of the United States. The Ronald Press. U.S.A.
37
Pion, R., 1976. Dietary Effects and Amino Acids in Tissues. Protein Metabolism and Nutrition, London, Butterworths. pp: 259-278.
38
Santiago, C.B. and Lovell, R.T., 1988. Amino acid requirements for growth of Nile tilapia. Journal of Nutrition. Vol. 118, pp: 1540-1546.
39
Sikorski, Z.E.; Kołakowska, A. and Burt, J.R., 1990. Postharvest biochemical and microbial changes. Seafood: resources, nutritional composition, and preservatives. Boca Raton, FL. CRC Press Inc. pp: 29-75.
40
Tasbozan, O.; Ozcan, O.; Erbas, C.; Undag, E.; Atici, A. and Adaklia, A., 2013. Determination of Proximate and Amino Acid Composition of Five Different Tilapia Species from the Cukurova Region (Turkey). Journal of Applied Biological Sciences. Vol. 7, No. 3, pp: 17-22.
41
Usinger, R.L., 1963. Aquatic insect of California. University of California Press. U.S.A. 508 p.
42
Wilson, R.P.; Harding, D.E.; Garling, D. and Jr, L., 1977. Effect of dietary pH on amino acid utilization and the lysine requirement of fingerling channel catfish. Journal of Nutrition. Vol. 107, pp: 166-170.
43
Wilson, R.P.; Allen, O.W.; Robinson, E.H. and Poe, W.E., 1978. Tryptophan and threonine requirements of fingerling channel catfish. Journal of Nutrition. Vol. 108, pp: 1595-1599.
44
Wilson, R.P.; Poe, W.E. and Robinson, E.H., 1980. Leucine, isoleucine, valine and histidine requirements of fingerling channel catfish. Journal of Nutrition. Vol. 110, pp: 627-633.
45
Wilson, R.P. and Poe, W.E., 1985. Relationship of whole body and egg essential amino acid patterns to amino acid requirement patterns in channel catfish, Ictalurus punctatus. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 80, pp: 385-388.
46
Wilson, R.P., 1991. Amino acid nutrition of fish: a new method of estimating requirement values. In: Proc. 12th U.S.–Japan Symp. on Aquaculture Nutrition, Newport, Oregon, Oct. 1991. pp: 49-54.
47
Worthington, C.C., 1991. Worthington enzyme manual related biochemical. 3rd Edition. Freehold. New Jersey. pp: 38-44.
48
Yan, T.; Teo, L.H. and Sin, Y.M., 1996. Effects of metals on α-amylase activity in the digestive gland of the green mussel, Perna viridis L. Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 56, No. 4, pp: 677-682.
49
Yildiz, M.; Şener, E. and Timur, M., 2007. Effects of variations in feed and seasonal changes on body proximate composition of wild and cultured sea bass (Dicentrarchus labrax L.). Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 7, pp: 45-51.
50
Zar, J.H., 2007. Biostatistical Analysis, 5th ed. Prentice Hall, Inc. Upper Saddle River, NJ, USA.
51
ORIGINAL_ARTICLE
اثر اسانس مرزه (Satureja hortensis) بر ماندگاری فیله ماهی قباد (Scomberomorus guttatus) در سردخانه
در این تحقیق افزایش دوره نگه داری فیله ماهی قباد (Scomberomorus guttatus) با تاکید بر محتوی لیپیدی در شرایط انجماد (18- درجه سانتی گراد) با استفاده از اسانس گیاه مرزه (Satureja hortensis) بررسی شد.اسانس گیاه مرزه (Satureja hortensis)، از خـانواده نعناعیان، حـاوی ترکیبات فنـولی نظیر سیمـول، تیمول و کارواکرول می باشد. در طی این آزمایش 5 قطعه ماهی قباد با وزن حدود 1 کیلوگرم به طور تازه از صیدگاه تهیه شد و به فیله هایی به قطعات وزنی حدود 100 گرم تقسیم و بعد از شستشو با سه سطح مختلف اسانس مرزه (0، 1/5 و 3 درصد) آغشته شد. سپس فیله ها در پوشش پلی اتیلنی بسته بندی شده در فریزر در دمای 18- درجه سانتی گراد نگه داری شدند. نمونه ها در فواصل زمانی روز 0، 30، 60 و 90 به ترتیب به آزمایشگاه برای سنجش میزان پراکسید، تیوباربیتوریکاسید، ویژگی های حسی و تعیین پروفایل اسیدچرب منتقل گردیدند. نتایج نشان داد که نگه داری فیله ماهی قباد آغشته به اسانس مرزه در سطح 3 درصد، طی مدت نگه داری باعث پایداری پروفایل اسیدهای چرب در مقایسه با نمونه شاهد گردید (0/05>p). هم چنین میزان شاخص پراکسید (PV) و اندیس تیوباربیتوریک اسید فیله ماهی های عمل آوری شده با اسانس مرزه نسبت به نمونه شاهد نیز دارای اختلاف معنی داری بودند (0/05>p). نتایج ویژگی های حسی حاکی از عدم تفاوت معنی دار در گروه های مورد بررسی در طی زمان بود. به طورکلی می توان بیان نمود که اضافه کردن 3 درصد اسانس مرزه به فیله ماهی می تواند روند فساد اکسیداسیونی را به طور معنی داری کاهش دهد.
http://www.aejournal.ir/article_105136_f98ef8f04bdae82455f5eff2993073af.pdf
2020-03-20
181
190
10.22034/aej.2020.105136
اسانس مرزه (Satureja hortensis)
ماهی قباد (Scomberomorus guttatus)
پراکسید
تیوباربیتوریک اسید
پروفایل اسیدهای چرب
زهرا
عیسی ملکی
1
گروه علوم و صنایع غذایی، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
نرگس
مورکی
nargess_mooraki@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
ژاله
خوشخو
zhaleh_khoshkhoo@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
سهراب
معینی
4
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
امینی، ب.؛ کرامت، ج.؛ حجت الاسلامی، م.؛ جهادی، م. و محمودیان، ک.، 1394. ارزیابی اثرات آنتی اکسیدانی اسانس گیاه مرزه زراعی در روغن کلزا و روغن ماهی کلیکا. علوم غذایی و تغذیه، سال 12، شماره 25، صفحات 19 تا 29.
1
امیدبیگی، ر.، 1386. رهیافت های تولید و فراوری گیاهان دارویی. جلد اول، چاپ چهارم، انتشارات آستان قدس رضوی.
2
انصاری، م.؛ سلطانی، م.؛ حسینی، ا. و کمالی، ا.، 1393. مطالعه اثر اسانس مرزه خوزستانی(Satureja khuzestanica) بر ممانعت از رشد باکتری لاکتوکوکوس گارویه در گوشت قزل آلای رنگین کمان در دمای یخچال. مجله میکروب شناسی موادغذایی. شماره 3، صفحات 33 تا 39.
3
پورملایی، ف.؛ جعفرپور، س، ع. و یگانه، س.، 1396. بررسی اثرات آنتی اکسیدانی و آنتی باکتریایی اسانس مرزنجوش(Origanum vulgarel) بر ماندگاری سوریمی تهیه شده از کپورمعمولی (Cyprinus carpio) در طول نگه داری در انجماد شیلات. مجله منابع طبیعی ایران. دوره 7، شماره 1، صفحات 44 تا 59.
4
فرزانفر، ع.، 1377. تهیه فیش برگر از ماهی کوسه. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده علوم و فنون دریایی.
5
علی، م.؛ هدایتی فرد، م.؛ پورغلام، ر.؛ گازرانی فراهانی، ش. و رضایی، م.، 1389. بررسی عمل آوری شور و بسته بندی وکیوم بر برخی پارامترهای فساد چربی ماهی کفال طلایی (liza aurata) در زمان نگه داری در سردخانه. فصلنامه زیست شناسی جانوری. سال 3، شماره 2، صفحات 23 تا 36.
6
علی بیگی، ط.؛ علیزاده دوغیکایی، ا. و رحیم آبادی، ا.، 1392. بررسی اثر آنتی اکسیدانی عصاره پوست پرتقال بر کیفیت فیله کپور معمولی (Cyprinus carpio)هنگام نگه داری در یخچال (4 C). نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 66، شماره 2، صفحات 185 تا 197.
7
خرمگاه، م. و رضائی، م.، 1391. تغییرات شیمیایی و حسی ماهی سفید (Rutilus frissi kutum) طی نگه داری به حالت انجماد. فصلنامه علوم و صنایع غذایی. دوره 9، صفحات 17 تا 24.
8
عزیزی، ا.؛ یگانه، س.؛ فیروزبخش، ف. و خلیلی، خ.، 1395. بررسی اثر اسانس مرزنجوش (Origanum vulgarel) بر شاخص های رشد و کیفیت فیله ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) در زمان نگه داری در دمای یخچال (14 C). مجله علمی شیلات ایران. شماره 1، صفحات 93 تا 109.
9
فتحی، س.، 1391. تولید فیش برگر تلفیقی کلیکا (Clupeonella (cultiventris کپور نقره ای(Hypoph thalmichthys molitrix) و بررسی ارزش غذایی و عمر ماندگاری آن در طول مدت نگه داری در سردخانه سانتی گراد. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه آزاد اسلامی واحد سوادکوه، مازندران.
10
فرجامی، ب.؛ حسینی، س. و ولی، ح.، 1393. بررسی اثر عصاره رزماری در کیفیت شیمیایی میکروبی میش فینگرهای تولید شده از گوشت چرخ شده ماهی فیتوفاگ (Hypophthalmichthys molitrix) در شرایط نگه داری سرد مجله منابع طبیعی ایران. دوره 67، شماره 4، صفحات 599 تا 610.
11
کامکار، ا.؛ توریان، ف.؛ بستی، ا.؛ میثاقی، ع. و شریعتی فر، ن.، 1391.ارزیابی ترکیبات شیمیایی اسانس گیاه مرزه (Saturejahortensis) و مقایسه فعالیت آنتی اکسیدانی آن با عصاره های آبی و الکلی. مجله تحقیقات دامپزشکی. شماره 2، صفحات 183 تا 190.
12
زرگر، م.؛ یگانه، س.؛ رضوی، ه. و اجاق، م.، 1390. تاثیر پوشش نگهدارنده خوراکی کازئینات سدیم غنی شده با اسانس آویشن شیرازی بر کیفیت و ماندگاری قزل آلای رنگین کمان نگه داری شده در یخچال. پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات، دانشکده علوم دام و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری.
13
معینی، س.، 1383. صنایع فرآورده های شیلاتی، سازمان تحقیقات و آموزش شیلات تهران. 312 صفحه.
14
مقصودلو، ی.؛ اصغرور، ا. و آریایی، پ.، 1392 اثر افزودن اسانس مرزه خوزستانی بر خصوصیات باکتریایی شیمیایی و حسی سوسیس فرانکفورتر. نشریه پژوهش و نوآوری در علوم و صنایع غذایی. دوره 2، شماره 2، صفحات 279 تا 294.
15
Aubourg, S.P.; Perez –Alonso, F. and Gallar do, J.M., 2004. Studies on Ran cidity in hibition in frozen horse mackerel (Trachuus trachurus) by citric acid an ascorbicacdis. European journal of lipid science and technology. Vol. 106, No. 4, pp: 232-244.
16
Bensid, A.; Ucar, Y.; Bendeddouche, B. and Ozogul, F., 2014. Effect of the icing with thyme, oregano and clove extracts on quality parameters of gutted and beheaded an chovy (<i) Engraulis encrasicholus () during chilled storage. food chemistry. Vol. 145, pp: 681-686.
17
Chouliara, E.; Karatapanis, A.; Sarvaidis, L. and Kontominas, M., 2007. Combired effect of oreganoessental and modified atmosphere packaging on shelf-life extension of fresh chicken breast meat, stored at food microbiology. Vol. 24, pp: 607-617.
18
Choultoudi, E.; Bravou, K.; Bimplia, S.A.; Tsironi, T.H.; Tsim Ogiannis, D.; Taoukis, P. and Oreopoulou, V., 2009. Animicrobia landan tioxidant activity of satureja thymbra in gilth ead seabream filletsedible coating laboratory. J. food chemistry. Vol. 1, No. 3, pp: 12-20.
19
Eun, J.B.; Bayle, J.A. and Hearnsberger, J.O., 1994. lipid peroxidant and chemical change in catfish (Icta lurus punctatus) muscle microsoes during frozen storage. J. food sci. Vol. 59, pp: 251-255.
20
Hettiara Chchy, N.S.; Glenn, K.C.; Gnanasam Bandam, R. and Johnson, M.J., 1996. Natural antioxidant extracts from fenugreek (Trigonella foenumgraceum) for ground beef patties. Journal of food science. Vol. 61, No. 3, pp: 516-519.
21
Lin. C.C. and Lin, C.S., 2005. Enhancement of the storage quality of frozen bonito fillet by glazing with teaextract. Food chem. Vol. 16, No. 2, pp: 16-175.
22
Ibrahim, S.M. and El-Sherif, S.A., 2008. Effect of some plant extracts on quality aspects of frozen tilapia fillets. Global yeterinaria. Vol. 2, No. 2, pp: 62-66.
23
Kalakowska, A.; Zienkowicz, L.; Domiszewski, Z. and Bienkiewicz, G., 2006. Lipid changes and quality of whole and gutted Rainbow trout during storage in ice. ActaIch thyologyicaet piscatorial. Vol. 36, No. 1, pp: 39-47.
24
Ladikosd, M. and lougovois, V., 1990. Lipid oxidation in muscle food: a review. food chemistery. Vol. 35, pp: 295-314.
25
Rezaei, M.; Sahari, M.A.; Moini, S.; Safari, M.; Rezaiean, M. and Ghafari, F., 2002. Some qualitative characteristics of lipid in an chovy kilka, (Clupeonella engrauliformis) during frozen storage. Iranian J. of Marine sciences. Vol. 1, pp: 55-65. (In persian)
26
Serdaroglu, M. and Felekoglu, E., 2005. Effects of using rose mary extract and onion juice on oxidative stability of sardine (Sardina pilchardus) mince. Journal of food quality. Vol. 28, pp: 109-120.
27
Negi, P.S., 2012. Plant extracts for the control of bacterial growth: efficacy, stability and safety issues for food application international journal of food microbiology. Vol. 156, pp: 1-17.
28
Ozogul, Y. and Ucer, Y., 2012. The Effects of natural extracts on the quality changes of frozen chub mackerel (scomber japonicus) burgers food and bioprocess technology. Vol. 10, 1007/s 11947-012-0794-9.
29
Zinoviadou, K.G.; Koutsoumanis, K.P. and Biliaderis, C.G., 2009. Physico chemical properties of whey protein isolate films containing organo oil and their antimicrobial action against spoilage flora of fresh beef meat science. Vol. 82, pp: 338-345.
30
ORIGINAL_ARTICLE
اندازه گیری فلزات سنگین آهن و روی در عضله ماهی سوکلا (Rachycentron canadum) در گروه های مختلف طولی در صید آب های شمال غربی خلیج فارس
این تحقیق به منظور سنجش و مقایسه میزان تجمع فلزات سنگین آهن و روی در بافت عضله ماهی سوکلا (Rachycentron canadum) و ارتباط آن با طول کل، وزن کل و سن ماهی در آب های شمال غربی خلیج فارس انجام شد. 96 نمونه ماهی در 6 گروه طولی تهیه شد. هضم شیمیایی نمونه ها به روش خشک و سنجش غلظت فلزات سنگین به روش جذب اتمی انجام گردید. اختلاف بین میانگینها با کمک آزمون آماری آنالیز واریانس یک طرفه (ANOVA) و ارتباط معنی دار در سطح 95 درصد تعیین شد. میانگین غلظت فلزات آهن و روی در بافت عضله ماهی سوکلا به ترتیب 2/78±25/50 و 1/23±9/06 میلی گرم بر کیلوگرم وزن خشک بود (0/05>P). بالاترین میزان تجمع فلز آهن در بین گروه های طولی مختلف متعلق به گروه 110-102 سانتی متر (0/74±28/21 میلی گرم بر کیلوگرم) و بیش ترین مقدار روی متعلق به گروه طولی بزرگ تر از 127 سانتی متر (0/47±10/27 میلی گرم بر کیلوگرم) بود. رابطه مثبتی بین عوامل طول کل، وزن کل و سن با تجمع فلزات آهن و روی برقرار بود که در سطح معنی داری دیده نشد (0/05<P). میزان روی در عضله ماهی سوکلا در مقایسه با آستانه استانداردهای جهانی سازمان بهداشت جهانی (WHO)، وزارت کشاورزی ـ شیلات انگلستان (MAFF) و انجمن ملی بهداشت و سلامت استرالیا (NHMRC)(به ترتیب 1000، 50 و 100 میلی گرم در کیلوگرم) پایین تر بود. میزان آهن در عضله این ماهی از حد مجاز استاندارد سازمان غذا و داروی آمریکا (FDA) (5 میلی گرم در کیلوگرم) بالاتر به دست آمد.
http://www.aejournal.ir/article_105222_90760606750819d06ee17c564f45ac8e.pdf
2020-03-20
191
200
10.22034/aej.2020.105222
فلزات سنگین
بافت عضله
ماهی سوکلا
خلیج فارس
معصومه
جهانگیری
masoumedjahangiri@yahoo.com
1
گروه شیلات، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
غلامحسین
محمدی
gh.mohammadi@gmail.com
2
پژوهشکده آبزی پروری جنوب، موسسۀ تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران
AUTHOR
محمد
ولایت زاده
mv.5908@gmail.com
3
باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
AUTHOR
ابراهیمی سیریزی، ز.؛ ساکی زاده، م.؛ اسماعیلی ساری، ع.؛ بهرامی فر، ن.؛ قاسمپوری، س.م. و عباسی، ک.، 1391. بررسی فلزات سنگین کادمیوم، سرب، مس و روی در بافت عضله اردک ماهی تالاب بین المللی انزلی، انباشتگی و ارزیابی خطرات. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. دوره 22، شماره 87، صفحات 57 تا 63.
1
اسماعیلی ساری،ع.، 1381. آلاینده ها، بهداشت و استاندارد محیط زیست. انتشارات نقش مهر، چاپ اول، تهران. 767 صفحه.
2
اسماعیلی ساری، ع.؛ نوری ساری، ح. و اسماعیلی ساری، ا.، 1386. جیوه در محیط زیست. انتشارات بازرگان، چاپ اول، رشت. 226 صفحه.
3
امینی رنجبر، غ. و ستوده نیا، ف.، 1384. تجمع فلزات سنگین در بافت عضله ماهی کفال دریای خزر در ارتباط با برخی مشخصات بیومتریک (طول استاندارد، وزن، سن و جنسیت). مجله علمی شیلات ایران. سال 14، شماره 3، صفحات 1 تا 18.
4
بهمئی، ز.، 1392. اندازه گیری مقادیر فلزات سنگین (آهن، روی و نیکل) در بافت عضلانی میش ماهی (Argyrosomus hololepidotus) در گروه های مختلف سنی در صید آب های شمال غربی خلیج فارس. پایان نامه کارشناسی ارشد، گروه شیلات. دانشگاه آزاد اسلامی واحداهواز.
5
جعفرزاده حقیقی، ن. و فرهنگ، م.، 1385. آلودگی دریا (ترجمه). انتشارات آوای قلم، چاپ اول، تهران. 393 صفحه.
6
جلالی جعفری، ب.، 1386. بیماری های محیطی و تغذیه ای ماهیان. انتشارات پرتو واقعه دانش نگار، چاپ اول، تهران. 416 صفحه.
7
جلالی جعفری، ب. و آقازاده مشگی، م.، 1386. مسمومیت ماهیان در اثر فلزات سنگین آب و اهمیت آن در بهداشت عمومی. انتشارات مان کتاب، چاپ اول، تهران. 134 صفحه.
8
جهانگیری، م.؛ محمدی، غ. و ولایت زاده، م.، 1396. اندازه گیری نیکل در عضله ماهی سوکلا (Rachycentron Canadum) در گروه های مختلف طولی در صید آب های شمال غربی خلیج فارس. نشریه فن آوری های نوین در توسعه آبزی پروری، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد آزادشهر. سال 11، شماره 3، صفحات 47 تا 58.
9
حسین زاده، ص.؛ قلی نژاد، ز. و بزرگ نیا، ع.، ۱۳۹۱. تجمع فلزات سنگین در بافت عضله ماهی خیاطه (Alburnoides bipunctatus ) در ارتباط با برخی مشخصات بیومتریک (طول استاندارد، وزن، سن و جنسیت). همایش ملی پژوهش های آبزیان و اکوسیستم های آبی، سوادکوه، دانشگاه آزاد اسلامی واحد سوادکوه. 11 صفحه.
10
دادالهی سهراب، ع.؛ نبوی، س.م.ب. و خیرور، ن.، 1387. ارتباط برخی مشخصات زیست سنجی با تجمع فلزات سنگین در بافت عضله و آبشش ماهی شیربت در رودخانه اروند رود. مجله علمی شیلات ایران. سال 17، شماره 4، صفحات 27 تا 33.
11
رسولی، ث.؛ ریاحی بختیاری، ع.؛ عسکری ساری، ا. و حسینی الهاشمی، ا.، 1392. میزان تجمع زیستی نیکل و وانادیوم در بافت های کبد و قلب تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus) در سواحل جنوبی دریای خزر. مجله شیلات دانشگاه آزاد اسلامی واحد آزادشهر. سال 7، شماره 3، صفحات 17 تا 24.
12
رضوی شیرازی، ح.، 1386. تکنولوژی فرآورده های دریایی (اصول نگه داری و عمل آوری جلد اول)، انتشارات پارس نگار، چاپ دوم، تهران. صفحه 325.
13
رییسی، م.؛ انصاری، م. و رحیمی، ا.، 1388. تعیین میزان سرب و کادمیوم در گوشت چهارگونه از کپور ماهیان رودخانه بهشت آباد استان چهارمحال و بختیاری و بررسی رابطه آن با سن و گونه ماهی. مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. سال 4، شماره 4، صفحات 37 تا 42.
14
ستاری، م.؛ شاهسونی، د. و شفیعی، ش.، 1382. ماهی شناسی 2 (سیستماتیک). انتشارات حق شناس، چاپ اول، تهران. 502 صفحه.
15
سعیدپور، ب.؛ نبوی، س.م.ب.؛ صدیق مرتضوی، م. و خشنود، ر.، 1386. مقایسه غلظت فلزات سرب و کادمیوم در بافت ماهیچه دو گونه از کفشک ماهیان سواحل استان هرمزگان. مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. سال 2، شماره 4، صفحات 61 تا 71.
16
شهاب مقدم، ف.؛ اسماعیلی ساری، ع.؛ ولی نسب، ت. و کریم آبادی، م.، 1389. مقایسه تجمع فلزات سنگین در عضله سپرماهی چهارگوش و گیش چشم درشت خلیج فارس. مجله علمی شیلات ایران. سال 19، شماره 2، صفحات 85 تا 94.
17
صادقی، س.ن.، 1380. ماهیان جنوب ایران (خلیج فارس و دریای عمان). انتشارات نقش مهر، چاپ اول، تهران. 438 صفحه.
18
عسکری ساری، ا.؛ فرهنگ نیا، م. و بازترابی، م.، 1388. اندازه گیری و مقایسه سرب، روی و مس در عضله و کبد هامور معمولی (Epinephelus coiodes). فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. سال 1، شماره 2، صفحات 101 تا 106.
19
عسکری ساری، ا.؛ خدادادی، م.؛ کاظمیان، م.؛ ولایت زاده، م. و بهشتی، م.، 1389. اندازه گیری و مقایسه فلزات سنگین (Zn، Mn، Cu، Fe) در ماهی بیاه (Liza abu) رودخانه های کارون و بهمنشیر استان خوزستان. مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. سال 5، شماره 1، صفحات 61 تا 70.
20
عسکری ساری، ا. و ولایت زاده، م.، 1390. بررسی غلظت سرب و روی در بافت های کبد و عضله دو گونه ماهی پرورشی کپور معمولی و قزل آلای رنگین کمان، مجله دامپزشکی ایران. سال 7، شماره 1، صفحات 30 تا 35.
21
عسکری ساری، ا. و ولایت زاده، م.، 1393. فلزات سنگین در آبزیان. انتشارات دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز، چاپ اول. 380 صفحه.
22
کنعانی، ر.، 1390. تعیین و مقایسه میزان فلزات سنگین Zn, Cd, Pb در بافت های عضله، آبشش و امعاء و احشا دو گونه ماهی هامور معمولی (Epinephelus coioides) و زمین کن دم نواری (Platycephalus indicus) و رسوبات منطقه جزر و مدی خورموسی (خور ماهشهر). پایان نامه کارشناسی ارشد. گروه محیط زیست. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات خوزستان.
23
کوسج، ن.؛ رحمانی، ع.؛ کامرانی، ا.؛ طاهری زاده، م.ر. و علی نیا، م.، 1392. بررسی میزان ارتباط طول بدن با میزان تجمع سرب در ماهی گل خورک والتونی (Periophthalmus waltoni) در شمال خلیج فارس. فصلنامه اقیانوس شناسی. سال 4، شماره 15، صفحات 1 تا 9.
24
محمدنبی زاده، س. و پورخباز، ع.ر.، 1392. ردیابی زیستی فلزات سنگین در بافت های ماهیان شورت و زمین کن در ذخیره گاه زیستکره حرا. فصلنامه دامپزشکی ایران. سال 94، شماره 1، صفحات 64 تا 75.
25
ناصری، م.؛ رضایی، م.؛ عابدی، ع. و افشارنادری، ا.، 1384. سنجش مقادیر برخی عناصر سنگین (آهن، مس، روی، منیزیم، منگنز، جیوه، سرب و کادمیوم) در بافت های خوراکی و غیرخوراکی ماهی کفال پشت سبز (Liza dussumieri) سواحل بوشهر. مجله علوم دریایی ایران. سال 4، شماره های 3 و 4، صفحات 59 تا 67.
26
Agah, H.; Leermakers, M.; Elskens, M.; Fatemi, S.M.R. and Baeyens, W., 2009. Accumulation of trace metals in the muscle and liver tissues of five species from the Persian Gulf. Journal of Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 157, pp: 499-514.
27
Al-Yousuf, M.H.; El-Shahawi, M.S. and Al-Ghais, S.M., 2000. Trace metals in liver, skin and muscle of Lethrinus lentjan fish species in relation to body length and sex. Sciences Total Environment. Vol. 256, pp: 87-94.
28
Benetti, D.D.; Alarcon J.F. and Stevens O.M., 2003. Advances in hatchery and grow out technology of marine fish candidate species for offshore aquaculture in the Caribbean. Proceedings of the Gulf and Caribbean Fisheries Institute. Vol. 45, pp: 473-487.
29
Bervoets, L.; Van Campenhoutk, K.; Reynders, H.; Kanapen, D.; Covaki, A. and Blust, R., 2009. Bioaccumulation of micropollutants and biomarker responses in caged carp (Cyprinus carpio). Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 72, pp: 720-728.
30
Canli, M. and Atli, G., 2003. The relationship between heavy metal (Cd, Cr, Cu, Fe, Pb, Zn) levels and the size of six Mediterranean fish species. Journal of Environmental Pollution. Vol. 121, pp: 129-136.
31
Demirak, A.; Yilmaz, F.; Tuna, A.L. and Zdemir, N., 2006. Heavy metals in water, sediment and tissues of Leuciscus cephalus from a stream in southwestern Turkey. Journal of chemosphere. Vol. 63, pp: 1451-1458.
32
Dural, M.; Goksu, M.Z.L.; Ozak, A.A. and Derici, B., 2006. Bioaccumulation of some heavy metals in different tissues of Dicentrarchus labrax and Mugil cephalus from the Camlik Lagoon of the eastern coast Mediterranean Turkey. Journal of Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 118, pp: 65-74.
33
Farkas, A.; Salanki, J. and Varanka, I., 2000. Heavy metal concentrations in fish of lake Balaton, Lakes and ReserVoirs. Journal of Research and Management. Vol. 5, pp: 271-279.
34
Farkas, A.; Salanki, J.; Speczira, A. and Varanka, I., 2001. Metal pollution as health indicator of lake ecosystems. International Journal of Occupational Medicine and Environmental Health. Vol. 14, No. 2, pp: 163-170.
35
Farkas, A.; Salanki, J. and Specziar, A., 2003. Age and size specific patterns of heavy metals in the organs of freshwater fish Abramis brama L. Populating a Low-contaminated site. Water Research. Vol. 37, No. 5, pp: 959-964.
36
Franks, J.S. and Brwon-Peterson, N.J., 2002. A review of age, Growth and reproduction of Cobia, Rachycentron canadum, from U.S. waters of the Gulf of Mexico and Atlantic Ocean. Proceedings of the 53d annual Gulf and Caribbean Fisheries institute, Biloxi, Mississippi. pp: 553-569.
37
Froese, R. and Pauly, D., 2000. Fish Base 2000: concepts, design and data sources. ICLARM, Los Banos, Laguna, Philippines. 344 p.
38
Ghaedi, M.; Shokrollahi, A.; Kianfar, A.H.; Pourfarokhi, A.; Khanjari, N.; Mirsadeghi, A.S. and Soylak, M., 2009. Pre concentration and separation of trace amount of heavy metal ions on bis (2-hydroxy acetophenone) ethylendiimine loaded on activated carbon. Journal of Hazardous Materials. Vol. 162, pp: 1408-1414.
39
Heath, A.G., 1987. Water pollution and fish physiology. (2nd ed.). CRC. Press. Boston, USA. 245 P.
40
Huggett, D.B.; Steevens, J.A.; Allgood, J.C.; Lutken, C.B.; Grace, C.A. and Benson, W.H., 2001. Mercury in sediment and fish from North Mississippi Lakes. Chemosphere. Vol. 42, pp: 923-929.
41
Imanpour Namin, J.; Mohammadi, M.; Heydari, S. and Monsef Rad, F., 2011. Heavy metals Cu, Zn, Cd and Pb in tissue, liver of Esox lucius and sediment from the Anzali international lagoon- Iran. Caspian Journal Environmental Science. Vol. 9, No. 1, pp: 1-8.
42
Jezierska, B. and Witeska, M., 2001. Metal Toxicity to Fish, University of Podlasie, Siedlce, Poland. Review Fish Biology Fishers. Vol. 11 No. 3, pp: 279.
43
Laimanso, R.Y.; Cheung, R.Y. and Chan, K.W., 1999. Metal concentrations in the tissues of Rabbitfish (Siganus oramin) collected from Tolo Harbour and Victoria Harbour in Hong kong. Journal of Marine Pollution Bulletin. Vol. 39, pp: 234.
44
Licata, P.; Trombetta, D.; Cristani, M.; Naccari, C.; Martino, D.; Calo, M. and Naccari, F., 2005. Heavy metals in liver and muscle of blue fin tuna (Thunnus thynnus) caught in Strait of Messina (sicily, Italy). Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 107, pp: 239-248.
45
Mance, G., 1990. Pollution threated of heavy metal in aquatic Environment, Elsvier applied science, London. 372 p.
46
Mendil, D.; Demirci, Z.; Tuzen, M. and Soylak, M., 2010. Seasonal investigation of trace element contents in commercially valuable fish species from the Black sea, Turkey. Journal of Food and chemical Toxicology. Vol. 48, pp: 865-870.
47
MOOPAM. 1999. Manual of oceanographic observations and pollutant analysis methods. ROPME. Kuwait. Vo1. 20.
48
Olowu, R.A.; Ayejuyo, O.O.; Adewuyi, G.U.; Adejoro, I.A.; Denloye, A.A.B.; Babatunde, A.O. and Ogundajo, A.L., 2010. Determination of heavy metals in fish tissues, water and sediment from Epe and Badagry Lagoons, Lagos, Nigeria. Journal of Chemistry. Vol. 7 No. 1, pp: 215-221.
49
Rashed, M.N., 2001. Monitoring of environmental heavy metals in fish from Nassar Lake. Environment International. Vol. 27, pp: 27-33.
50
Salari Aliabadi, M.A.; Rezvani Gilkolaei, S.; Savari, A.; Zolgharnean, H. and Nabavi, S.M.B., 2008. Microsatellite polymorphism in Iranian populations of cobia (Rachycentron canadum G) Biotechnology. Vol. 7, No.4, pp. 92-97.
51
Shulman, G.E., 1974. Life cycles of fish. 1st ed. New York: Wiley.
52
Storelli, M.M., 2008. Potential human health risks from metals (Hg, Cd, and Pb) and polychlorinated biphenyls (PCBs) via seafood consumption: Estimation of target hazard quotients (THQ.s) and toxic equivalents (TEQs). Food and Chemical Toxicology. Vol. 46, pp: 2782-2788.
53
Stoskopf, M.K., 1993. Fish medicine. WB. Saunders Co. London, England. 882 p.
54
Turkmen, M. and Ciminli, C., 2007. Determination of metals in fish and mussel species Byinductively coupled plasma-atomic emission spectrometry. Food Chemistry. Vol. 103, pp: 670-675.
55
Turkmen, M.; Turkmen, A.; Tepe, Y.; Ates, A. and Gokkus, K., 2009. Determination of metal contaminations in sea foods from Marmara, Aegean and Mediterranean Seas: twelve fish species. Food Chemistry. Vol. 108, pp: 794-800.
56
Turkmen, A.; Turkmen, M.; Tepe, Y. and Cecik, M., 2010. Metals in tissues of fish from Yelkoma Lagoon, northeastern Mediterranean. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 168, pp: 223-230.
57
Turner, J.P. and Rooker, J.R., 2005. Effect of dietary fatty acids on the body of larval and juvenile cobia and prey. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 322, pp: 13-27.
58
Ubalua, A.O.; Chijioke, U.C. and Ezeronye, O.U., 2007. Determination and Assessment Heavy Metal Content in fish and shellfish in Aba River, Abia State, Nigeria. KMITL Science Technology. Vol. 7, No. 1, pp: 16-23.
59
Weatherley, A.H. and Gill, H.S., 1987. The Biology of Fish Growth. Orlando, FL: Academic Press.
60
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تراکمهای مختلف پرورش ماهی سی باس آسیایی (Lates calcarifer) در استخرهای میگو چوئبده آبادان
صنعت میگو در سال های اخیر با چالش بزرگی روبرو بوده، به طوری که بیماری ویروسی اکثر مزارع را به صورت نیمه فعال یا غیرفعال درآورده است. ماهی سی باس به دلیل رشد سریع، تحمل شوری و توانایی در پذیرش غذای فرموله به عنوان گزینه که پتانسیل احیای این مزارع را دارد انتخاب شد. در این راستا به صورت آزمایشی در مجتمع پرورش میگو چوئبده آبادان از خرداد تا آذر 1396 که شامل 9 استخر 7000 مترمربعی در 3 تیمار با 3 تکرار، 3 تیمار با تراکمهای 12000، 13500 و 15000 قطعه با وزن اولیه 40 گرم، در هکتار ذخیره سازی شد. فاکتورهای فیزیکوشیمیایی آب، دما، pH و اکسیژن به صورت مداوم، زیست سنجی به صورت 3 هفته یک بار و شاخصهای تغذیه ای و رشد شامل ضریب رشد ویژه (SGR)، ضریب تبدیل غذایی (FCR)، افزایش وزن (WG)، میزان کارایی پروتئین (PER) ودرصد بازماندگی (SVR) مورد بررسی قرار گرفت. وزن نهایی پس از 175 روز در تیمارهای مختلف وزن نهایی تراکمهای 1، 2 و 3 به ترتیب 9/14±749/17، 9/5±763/5 و 8/3±662/5 اختلاف معنی داری را نشان دادند (0/05>P). ضریب تبدیل غذایی در تیمارهای 1، 2 و 3 به ترتیب 0/03±1/39، 0/05±1/42 و 0/06±1/45 و درصد بازماندگی نیز در تیمارهای 1، 2 و 3 به ترتیب 1/46±83/84، 0/86±82/54 و 0/87±86/21 اختلاف معنی داری را نشان داد (0/05>P). با توجه به نتایج به دست آمده در تیمارهای مختلف، تراکم متوسط 13500 قطعه در هکتار در استخرهای خاکی میگو بهترین کارایی را در این پژوهش نشان داد که می تواند به عنوان یک الگویی در پرورش به کار گرفته شود.
http://www.aejournal.ir/article_105172_cd613107fceb304288c6d89f17bb60a9.pdf
2020-03-20
201
208
10.22034/aej.2020.105172
تراکم مختلف
ماهی سی باس آسیایی
استخرهای میگو
چوئبده آبادان
مهرداد
محمدی دوست
mmohammadidoust@yahoo.com
1
پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران
AUTHOR
محمد
یونس زاده فشالمی
m_yooneszadeh@yahoo.com
2
پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران
AUTHOR
فاطمه
حکمت پور
hekmatpourf@gmail.com
3
پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران
AUTHOR
سیدعبدالصاحب
مرتضوی
saheb.mortezavi@gmail.com
4
پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران
AUTHOR
لفته
محسنی نژاد
lmohseni1@yahoo.com
5
پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
Abdelghany, A.E. and Ahmad, M.H., 2002. Effects of feeding rates on growth and production of Nile Tilapia, common carp and silver carp polycultured in fertilized ponds. Aquaculture Research. Vol. 33, No. 6, pp: 415-423.
1
Aldon, E.T., 1997. The culture of seabass. SEAFDEC Asian Aquaculture. Vol. 19, No. 4, pp: 14-17.
2
Allen, G.R.; Midgley, S.H. and Allen, M., 2002. Field guide to the freshwater fishes of Australia. Western Australian Museum, Perth, Western Australia. 394 p.
3
Barcellos, L.J.G.; Nicolaiewsky, S.; De Souza, S.M.G. and Lulhier, F., 1999. Plasmatic levels of cortisol in the response to acute stress in Nile tilapia, Oreochromis niloticus (L.), previously exposed to chronic stress. Aquaculture Research. Vol. 30, No. 6, pp: 437-444.
4
Barton B.A. and Iwama, G.K., 1991. Physiological changes in ®sh from stress in aquaculture with emphasis on the response and effects of corticosteroids. Annual Reviews of Fish Diseases. Vol. 10, pp: 3-26.
5
Bonga, S.E.W., 1997. The stress response of fish. Physiological Reviews. Vol. 77, pp: 591-626.
6
Chang, S.F.; Ngoh, G.H.; Kueh, L.F.S.; Qin, Q.W.; Chen, C.L.; Lam, T.J. and Sin, Y.M., 2001. Development of a tropical marine fish cell line from Asian seabass (Lates calcarifer) for virus isolation. Aquaculture. Vol. 192, pp: 133-145.
7
Delgado, C.L.; Wada, N.; Rosegrant, M.W.; Meijer, S. and Mahfuzuddin, A., 2003. Outlook for fish to 2020 meeting global demand. A 2020 Vision for Food, Agriculture, and the Environment Initiative. International Food Policy Research Institute Washington, D.C., U.S.A. World Fish Center Penang, Malaysia. FAO. 2012.
8
Fagerlund, U.H.M.; Mcbride, J.R. and Stone, E.T., 1981. Stress-Related Effects of Hatchery Rearing Density on Coho Salmon. Transactions of the American Fisheries Society. Vol. 110, No. 5, pp: 644-649.
9
Garza-Gil, M.D.; Varela-Lafuente, M. and Caballero Miguez, G., 2009. Price and production trends in the marine fish aquaculture in Spain. Aquaculture Research. Vol. 40, pp: 274-281.
10
Hengsawat, K.; Ward, F.J. and Jaruratjamorn, P., 1997. The effect of stocking density on yield, growth and mortality of African catfish (Clarias gariepinus Burchell 1822) cultured in cages. Aquaculture. Vol. 152, pp: 67-76.
11
Hung, S.S.O.; Aikins, K.F.; Lutes, P.B. and Xu, R., 1989. The ability of juvenile white sturgeon (Acipenser transmontanus) to utilize different carbohydrate source. Journal Nutrition. Vol. 119, pp: 272-733.
12
Hung, S.S.O. and Lutes, P.B., 1987. Optimum feeding rate of hatchery-produced juvenile white sturgeon (Acipenser transmontanus): at 20 C. Aquaculture. Vol. 65, No. 3-4, pp: 307-317.
13
Jobling, M., 1994. Fish Bioenergetics. Chapman and Hall, London. 309 p.
14
Jobling, M.; Johnsen, H.K.; Pettersen, G.W. and Henderson, RJ., 1995. Effect of temperature on reproductive development in Arctic charr, SalvelillllS a/pilllls (L.). Journal of Thermal Biology. Vol. 20, pp: 157-165.
15
Kebus M.J.; Collinsa, M.T.; Brownfielda M.S.; Amundsonb T.B. and Kebus M.J., 1992. Effects of rearing density on the response and growth of rainbow trout. Journal of Aquatic Animal Health. Vol. 4, pp: 1-6.
16
McGeer, A.; Campbell, B.; Emori, T.G.; Hierholzer, W.J.; Jackson, M.M.; Nicolle, L.E.; Peppler, C.; Rivera, A.; Schollenberger, D.G. and Simor, A.E., 1991. Definitions of infection for surveillance in long-term care facilities. Am J Infect Control. Vol. 19, No. 1, pp: 1-7.
17
Paterson, B.D.; Rimmer, M.A.; Meikle, G.M. and Semmens, G.L., 2003. Physiological responses of the Asian sea bass, Lates calcarifer to water quality deterioration during simulated live transport: acidosis, red-cell swelling, and levels of ions and ammonia in the plasma. Aquaculture. Vol. 218, pp: 717-728.
18
Peters, G.; Delventhal, H. and Klinger, H., 1980. Physiological and morphological effects of social stress on the eel, Anguilla anguilla L. In Fish Disease (Ahne, W., ed.), Berlin: Springer-Verlag. pp: 225-227.
19
Pickerring, A.D. and Stewart, A., 1984. Acclimation of the internal tissue of the brown trout, Salmo truta L., to the chronic crowding stress. J. Fish. Biol. Vol. 24, pp: 731-740.
20
Pottinger, T.G.; Pickering, A.D. and Hurley, M.A., 1992. Consistency in the stress response of individuals of two strains of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Aquaculture. Vol. 103, pp: 275-289.
21
Rafatnezhad, S.; Falahatkar B. and Gilani, M.H.T., 2008. Effects of stocking density on haematological parameters, growth and fin erosion of great sturgeon (Huso huso) juveniles Aquac. Res. Vol. 39, pp: 1506-1513.
22
Ronyai, A.; Peteri, A. and Radics, F., 1990. Cross breeding of sterlet and Lena River’s sturgeon. Aquaculture Hungrica (Szarwas). Vol. 6, pp: 13-18.
23
Sloman, K.A.; Gilmour, K.M.; Taylor, A.C. and Metcalfe, N.B., 2000. Physiological effects of dominance hierarchies within groups of brown trout, Salmo fruita, held under simulated natural conditions. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 22, pp: 11-20.
24
Szczepkowski, M.; Szczepkowska, B. and Piotrowska, I., 2011. Impact of higher stocking density of juvenile Atlantic sturgeon, Acipenser oxyrinchus Mitchill, on fish growth, oxygen consumption, and ammonia excretion. Arch. Pol. Fish. Vol. 19, pp: 59-67.
25
Szkudlarek, M. and Zakêoe Z., 2002. The effect of stock density on the effectiveness of rearing pikeperch Sander lucioperca (L.) summer fry Arch. Pol. Fish. Vol. 10, pp: 115-119.
26
Vigayan, M.M. and Leatherland, J.F., 1988. Effect of stocking density on the growth and stress-response in brook charr, Salvelinus fontinalis. Aquaculture. Vol. 75, pp: 159-170.
27
Wedemeyer, G.A., 1997. Effects of rearing conditions on the health and physiological quality of fish in intensive culture. In: Fish Stress and Health in Aquaculture. (Iwama, G.K.; Pickering, A.D.; Sumpter, J.P. and Schrek, C.B., eds), Society for Experiment Biology, Seminar Series 62. Cambridge: Cambridge University Press. pp: 35-72.
28
Whitehead, P.J.P., 1984. Centropomidae. In W. Fischer and G. Bianchi (eds.) FAO species identification sheets for fishery purposes. Western Indian Ocean (Fishing Area 51). [pag. var.] FAO, Rome. Vol. 1.
29
Yooneszadeh Feshalami, M.; Amiri, F.; Nickpey, M.; Mortezavizadeh, S.A.; Gisbert, E. and Torfi, M., 2016. The influence of stocking density on growth and physiological responses of beluga, Huso huso (Brandt, 1869) and ship sturgeon, Acipenser nudiventris (Lovetsky, 1828) juveniles in a flow-through system. World Aquaculture Society. doi: 10.1111/jwas.1237
30
Yooneszadeh Feshalami, M.; Torfi, M.; Amiri, F.; Mortezavizadeh, S.A. and Gisbert, E., 2018. Optimal stocking density for beluga, Huso huso, and ship sturgeon, Acipenser nudiventris during the grow-out phase. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 35, pp: 303-306.
31
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی رفتار بویایی تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus) تحت تاثیر نانوذرات نقره
بویایی یکی از حواس مهم ماهی ها برای تشخیص بوها از فاصله های دور است و نقش مهمی در رفتار غذایی و جهت یابی آن ها دارد. این حس می تواند معیار قابل اعتمادی جهت سنجش تاثیر آلاینده ها بر موجودات آبزی باشد. از این رو این مطالعه سعی داشته با بررسی رفتار غذایی بویایی تاس ماهی ایرانی تاثیرات نانوذرات نقره را مورد بررسی قرار دهد. این رفتار در ماهی های گروه شاهد و ماهی هایی که به مدت 7 روز در معرض سه غلظت0/01، 0/005 و 0/001 میلی گرم در لیتر نانوذرات نقره قرار گرفته بودند، بررسی شد (هر تیمار در 3 تکرار). جهت ارزیابی رفتار بویایی تاس ماهی ایرانی از شش اسیدآمینه استفادهشد. طی آزمایش آب حاوی اسیدآمینه به مدت 3 دقیقه از یک سمت آکواریوم وارد می شد. 30 ثانیه بعد از شروع آزمایش تعداد ماهی های حاضر در همان سمت و واکنش و رفتار آن ها به اسیدآمینه ثبت می شد. طبق نتایج به دست آمده تمایل و واکنش ماهی ها به اسیدآمینه های آلانین، گلایسین و لوسین که جزو اسیدآمینه های جاذب برای تاس ماهی ایرانی هستند به صورت معنی داری کاهش یافته بود که این کاهش تحت تاثیر غلظت نانوذرات نقره بود و در غلظت 0/01 میلی گرم در لیتر نانوذرات نقره بیش ترین کاهش مشاهده شد. هم چنین پاسخ های رفتار بویایی نیز فقط در غلظت 0/01 میلی گرم در لیتر نسبت به گروه شاهد تفاوت معنی دار را نشان داد اما پاسخ ماهی ها به اسیدآمینه های دافع (تیروزین، اسیدآسپارتیک و اسیدگلوتامیک) در هیچ کدام از غلظت های نانوذرات نقره معنی دار نبود.
http://www.aejournal.ir/article_105183_7663c4ad826e0ea2c4bb4f0195288935.pdf
2020-03-20
209
216
10.22034/aej.2020.105183
رفتار غذایی
بویایی
اسیدآمینه
جذابیت بویایی
آلاینده
شیدا
گلی
golisheyda@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
ولی اله
جعفری
v.jafari.sh110@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
حامد
پاک نژاد
hkolangi@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
الکساندر
کاسومیان
alex_kasumyan@mail.ru
4
گروه ماهی شناسی، دانشکده زیست شناسی، دانشگاه ایالتی مسکو، مسکو، روسیه
AUTHOR
Asharani, P.V.; Kah Mun, G.L.; Hande, M.P. and Valiyaveettil, S., 2009. Cytotoxicity and genotoxicity of silver nanoparticles in human cells. ACS Nano. Vol. 3, pp: 279-290.
1
Baatrup, E., 1991. Structural and functional effects of heavy metals on the nervous system, including sense organs, of fish. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Comparative Pharmacology. Vol. 100, pp: 253-257.
2
Bilberg, K.; Doving, K.B.; Beedholm, K. and Baatrup, E., 2011. Silver nanoparticles disrupt olfaction in Crucian carp (Carassius carassius) and Eurasian perch (Perca fluviatilis). Aquatic toxicology. Vol. 104, pp:145-152.
3
Billard, R. and Lecointre, G., 2000. Biology and conservation of sturgeon and paddlefish. Reviews in Fish Biology and Fisheries. Vol. 10, pp: 355-392.
4
Dumont, H.J., 1998. The Caspian Lake: history, biota, structure, and function. Limnology and Oceanography. Vol. 43, pp: 44-52.
5
Goli, S.; Jafari, V.; Ghorbani, R. and Kasumyan, A., 2015. Taste preferences and taste thresholds to classical taste substances in the carnivorous fish, Rutilus frisii kutum (Teleostei: Cyprinidae). Physiology and behavior. Vol. 140, pp: 111-117.
6
Griffin, S.; Masood, M.; Nasim, M.; Sarfraz, M.; Ebokaiwe, A.; Schafer, K.H.; Keck. C. and Jacob, C., 2018. Natural nanoparticles: A particular matter inspired by nature. Antioxidants. Vol. 7, pp: 1-21.
7
Griffitt, R.J.; Brown-Peterson, N.J.; Savin, D.A.; Manning, C.S.; Boube, I.; Ryan, R.A. and Brouwer, M., 2012. Effects of chronic nanoparticulate silver exposure to adult and juvenile sheep shead minnows (Cyprinodon variegatus). Environmental Toxicology and Chemistry. Vol. 31, pp: 160-167.
8
Griffitt, R.J.; Lavelle, C.M.; Kane, A.S.; Denslow, N.D. and Barber, D.S., 2013. Chronic Nanoparticulate Silver Exposure Results in Tissue Accumulation and Transcriptomic Changes in Zebrafish. Aquatic Toxicology. Vol. 130, pp: 192-200.
9
Hara, T.J., 2012. Fishchemoreception. Vol. 6. Springer Science and Business Media.
10
Hyun, J.S.; Lee, B.S.; Ryu, H.Y.; Sung, J.H.; Chung, K.H. and Yu, I.J., 2008. Effects of repeated silver nanoparticles exposure on the histological structure and mucins of nasal respiratory mucosa in rats. Toxicology. Letter. Vol. 182, pp: 24-28.
11
Johari, S.A.; Kalbassi, M.R.; Yu, I.J. and Lee, J.H., 2015. Chronic effect of waterborne silver nanoparticles on rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): histopathology and bioaccumulation. Comparative Clinical Pathology. Vol. 24, pp: 995-1007.
12
Kahru, A. and Dubourguier, H.C., 2010. From ecotoxicology to nanoecotoxicology. Toxicology. Vol. 269, pp: 105-119.
13
Kashiwada, S.; Ariza, M.E.; Kawaguchi, T.; Nakagame, Y.; Jayasinghe, B.S.; Gartner, K. and Chandler, G.T., 2012. Silver nanocolloids disrupt medaka embryogenesis through vital gene expressions. Environmentalscience and technology. Vol. 46, pp: 6278-6287.
14
Kasumyan, A.O., 2001. Effects of chemical pollutants on foraging behavior and sensitivity of fish to food stimuli. Journal of Ichthyology. Vol. 41, pp: 76-87.
15
Kasumyan, A.O., 2002. Sturgeon food searching behaviour evoked by chemical stimuli: a reliable sensory mechanism. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 18, pp: 685-690.
16
Klaprat, D.A.; Evans, R.E. and Hara, T.J., 1992. Environmental Contaminants and Chemoreception in Fishes. In Fish Chemoreception. Chapman and Hall, London, UK. pp: 321-341.
17
Lari, E.; Abtahi, B.; Hashtroudi, M.S.; Mohaddes, E. and Doving, K.B., 2015. The effect of sublethal concentrations of the water‐soluble fraction of crude oil on the chemosensory function of Caspian roach (Rutilus rutilus). Environmental toxicology and chemistry. Vol. 34, pp: 1826-1832.
18
McShan, D.; Ray, P.C. and Yu, H., 2014. Molecular toxicity mechanism of nanosilver. Journal of food and drug analysis. Vol. 22, pp: 116-127.
19
Nair, P.M.G. and Choi, J., 2011. Characterization of a ribosomal protein L15 cDNA from Chironomus riparius (Diptera; Chironomidae): transcriptional regulation by cadmium and silver nanoparticles. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Biochemistry and Molecular Biology. Vol. 159, pp: 157-162.
20
Olsen, K.H., 2010. Effects of Pollutants on Olfactory Mediated Behaviors in Fish and Crustaceans. In: Breithaupt, T. and Thiel, M., (eds) Chemical Communication in Crustaceans. Springer, New York, NY. pp: 507-529.
21
Pourkazemi, M., 2006. Caspian Sea sturgeon conservation and fisheries: past present and future. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, pp: 12-16.
22
Salari Joo, H.; Kalbassi, M.R.; Yu, I.J.; Lee, J.H. and Johari, S.A., 2013. Bioaccumulation of silver nanoparticles in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): influence of concentration and salinity. Aquatic Toxicology. Vol. 140, pp: 398-406.
23
Shamushaki, V.A.J.; Abtahi, B. and Kasumyan, A.O., 2011. Olfactory and taste attractiveness of free amino acids for Persian sturgeon juveniles, Acipenser persicus: a comparison with other acipenserids. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 27, pp: 241-245.
24
Steele, C.W.; Owens, D.W. and Scarfe, A.D., 1990. Attraction of Zebrafish (Brachydanio rerio) to Alanine and its Suppression by Copper. Fish Biology. Vol. 36, pp: 341-353.
25
Tierney, K.B.; Baldwin, D.H.; Hara, T.J.; Ross, P.S.; Scholz, N.L. and Kennedy, C.J., 2010. Olfactory toxicity in fishes. Aquatic toxicology. Vol. 96, pp: 2-26.
26
Viswaprakash, N.; Dennis, J.C.; Globa, L.; Pustovyy, O.; Josephson, E.M.; Kanju, P.; Morrison, E.E. and Vodyanoy, V.J., 2009. Enhancement of odorant-induced responses in olfactory receptor neurons by zinc nanoparticles. Chemical Senses. Vol. 34, pp: 547-557.
27
Volkoff, H. and Peter, R.E., 2006. Feeding behavior of fish and its control. Zebrafish. Vol. 3, pp: 131-140.
28
Wise, J.P.; Goodale, B.C.; Wise, S.S.; Craig, G.A.; Pongan, A.F.; Walter, R.B. and Spalding, M.J., 2010. Silver nanospheres are cytotoxic and genotoxic to fish cells. Aquatic Toxicology. Vol. 1, No. 97, pp:34-41.
29
Woodrow Wilson Database. 2014. Nanotechnology consumer product inventory. http://www. nanotechproject.org/cpi/about/ analysis/ accessed at 10/14/2014.
30
Wu, Y.; Zhou, Q.; Li, H.; Liu, W.; Wang, T. and Jiang, G., 2010. Effects of silver nanoparticles on the development and histopathology biomarkers of Japanese medaka (Oryzias latipes) using the partial-life test. Aquatic Toxicology. Vol. 100, pp: 160-167.
31
ORIGINAL_ARTICLE
اثر پری بیوتیک اولترا بر فاکتورهای رشد و تغذیه ای فیل ماهیان ( Huso huso) پرواری نر و ماده
مطالعه حاضر با هدف تعیین تأثیرپریبیوتیکاولترا ای مکس به میزان 1 گرم در کیلوگرم جیره بر خصوصیات مورفومتریک، عملکرد رشد و شاخص هایتغذیه در فیل ماهیان (Huso huso) نر و ماده پرواری به مدت 120 روز صورت گرفت. بدین منظور، تعداد 60 عدد ماهی با میانگین وزنی 0/27±4/42 کیلوگرم پس از سازگاری یک هفته ای به شکل تصادفی در 2 تیمار و هر کدام با سه تکرار (با تعداد 10 عدد در هرتکرار) تقسیم شدند. نتایج نشان داد که پریبیوتیک اولترا ای مکس سبب بروز اختلاف معنی دار در فاکتورهای مورفومتریک گردید. اما در پارامترهایی نظیر طول چنگالی و دور بدن در ناحیه باله سینه ای بی تاثیر بود. هرچند که افزودن میزان 1 گرم در کیلوگرم پریبیوتیک اولترا ای مکس به جیره غذایی ماهیان سبب بهبود پارامترهای رشد و تغذیه همانند، نرخ رشد ویژه، نرخ وزن نسبی، ضریب رشد روزانه، ضریب تبدیل غذایی و غذای نسبی خورده شده گردید، اما اختلاف معنی داری در بین تیمارهای آزمایشی مشاهده نگردید (0/05<P). میزان ضریب چاقی و کارایی تبدیل غذایی بیانگر وجود اختلاف معنی دار بین تیمارهای آزمایشی با تیمار شاهد بود. براساس تجزیه و تحلیل داده ها مشخص گردید پریبیوتیک تجاری اولترا ای مکس اثر بهتر و مؤثرتری بر فیل ماهیان نر پرواری دارد.مجموع نتایج حاصل از این مطالعه نشان داد که جیره های غذایی مکمل سازی شده با پری بیوتیک تجاری اولترا ای مکس به میزان 1 گرم در کیلوگرم جیره می تواند در بهبود فاکتورهای مورفومتریک و عملکردرشد و شاخص های تغذیه ای مؤثر واقع شود.
http://www.aejournal.ir/article_105245_4052304fa08af666457e15df2aa6e13d.pdf
2020-03-20
217
222
10.22034/aej.2020.105245
اولترا ای مکس
رشد
فاکتور تغذیه
فیل ماهی پرواری
مجید
رضایی
rmajid24@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی ومنابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
حجت الله
جعفریان
hojat.jafaryan@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی ومنابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
هادی
رییسی
raeisi_hadi@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی ومنابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
LEAD_AUTHOR
سید مصطفی
عقیلی نژاد
aghilinejhad.1341@gmail.com
4
مرکز بهره برداری ماهیان خاویاری، استان گلستان، گرگان، ایران
AUTHOR
ایری، م.؛ بیواره، م.؛ رنجدوست، م.؛ جعفریان، س. و جعفریان، ح.، 1397. بررسی اثرات سطوح مختلف پریبیوتیک ایمکس اولترا (مخمرSaccharomycescerevisiae) بر پارامترهای رشد، بقاء، کارایی تغذیه و مقاومت در برابر استرس های محیطی در بچه ماهیان نورس کپورمعمولی (1758.Cyprinus carpio Linnaeus). مجله بهره برداری و پرورش آبزیان . جلد 7، شماره 1، صفحات 11 تا 25.
1
بیواره، م. و جعفریان، ح.، 1396. مقایسه عملکردهای رشد، وضعیت تغذیه، بقاء و مقاومت در برابر استرس های محیطی در بچه ماهیان نورس کپور معمولی با جیره های غذایی مکمل سازی شده توسط دو پریبیوتیک تجاری ایمکس و اولترا ایمکس فصلنامه بیولوژی کاربردی. دوره 6، شماره 1، صفحات 41 تا 52.
2
حلاجیان، ع.؛ کاظمی، ر. و یوسفی جوردهی، ا.، 1389. اثر پودر گل میخک بر مدت زمان بی هوشی و بازگشت از بی هوشی در فیل ماهی (Husohuso) پرورشی 4 ساله. مجله شیلات. سال 5، شماره 2، صفحات 133 تا 140.
3
سوداگر، م.؛ جعفری شموشکی، و.؛ حسینی، س.ع.؛ گرگین، س. و عقیلی، ک.، 1386. اثر اسیدآمینه آسپارتیک و آلانین به عنوان ماده جاذب غذایی بر شاخص های رشد و بقاء بچه فیل ماهیان. مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی. جلد 15، شماره 1، ویژه نامه. منابع طبیعی. صفحات 44 تا 53.
4
کیوان،ا.،1382. ماهیان خاویاری ایران سیستماتیک. بیولوژی. تکثیر مصنوعی. ارزیابی و ترمیم ذخایر. بهره برداری و تولید خاویار. انتشارات نقش مهر. 65 صفحه.
5
Akrami, R.; Karimabadi, K.; Mohammadzadeh, H.; and Ahmadifar, E., 2009b. Effect of dietary mannan oligosaccharide on growth performance. survival, body composition andsalinity stress resistance in Kutum fry stage. Journal of Marine Science and Technology. Vol. 8, pp: 47-57.
6
Austreng, E., 2000. Digestibility determination in fish using chromic oxide marking and analysis of contents from different segments of the gastrointestinal tract. Aquaculture. Vol. 13, pp: 265-272.
7
Berg, L.S., 1948. Freshwater fishes of the USSR. & adjacent countries (IPST) Jerusalem. 4th edition.Vol. 1, 504 p.
8
Cerezuela, R.; Cuesta, A.; Meseguer, J. and Esteban, A., 2008. Effect of inulin on Gilthead seabream innate immune parameters. Fish. Shellfish. Immunol. Vol. 24, pp: 663-668.
9
De Silva, S.S. and Anderson, T.A., 1995. ln: Fish Nutrition in Aquaculture. Chapman and Hall, London. 319 p.
10
Djauhari, R.; Widanarni, S.; Agus Suprayudi, M. and Muhammad Zairin, Jr., 2017. Growth Performance and Health Status of common Carp (Cyprinus carpio) Supplemented with Prebiotic from Sweet Potato Extract. Pakistan J of Nutrition. Vol. 10, pp: 155-163.
11
Ebrahimi, G.H.; Ouraji, H.; Khalesi, M.K.; Sudagar, M.; Barari, A.; Zarei Dangesaraki, M. and Jani Khalili, K.H., 2012. Effects of a prebiotic, Immunogen®, on feed utilization, body composition, immunity and resistance to Aeromonas hydrophila infection in the common carp Cyprinus carpio fingerlings. J. Anim. Physiol. Anim. Nutr. Vol. 96, pp: 591-599.
12
Ferket, P.R., 2004. Alternatives to antibiotics in poultry production: responses, practical experience & recommendations. Nutritional Biotechnology in the Feed and Food Industries. Nottingham University Press, UK. 57 p.
13
Fooks, L.J. and Gibson, G.R., 2002. Probiotic as a modulators of the gut flora. British Journal of Nutrition, Suppl. Vol. 1, pp: 39-49.
14
Hevroy, E.M.; Espe, M.; Waagbo, R.; Sandness, K.; Rund, M. and Hemre, G.I., 2005. Nutrition utilization in Atlantic Salmon (Salmo salar L) fed increased level of fish protein hydrolysate during a period of fast growth. Aquaculture Nutrition. Vol. 11, pp: 301-313.
15
Jafaryan, H.; Azari Takami, G.; Kamali, A.; Soltani, M. and Habibirezaei, M., 2006. The use of probiotic bacillus bioencapsulated with Artemia urmiana nauplii for the growth and survival in Acipenser persicus larvae. Journal of Agriculture Science & Natural Resources. Vol. 14, pp: 77-87.
16
Jafaryan, H.; Soltani, M.; Taati, A. and Nazarpoor Morovat, R., 2011. The comparsion of performance of isolated sturgeon gut bacillus (Acipenser persicus and Huso huso) with commercial microbial products on growth and survival of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) larvae. Journal of Veterinary Research. Vol. 66, No. 1, pp: 39-46.
17
Lashkarbolouki, M.; Jafaryan, H.; Keramat, A.; Farhangi, M. and Adineh, H., 2012. The effect of yeast-enriched (Saccharomyces cerevisiae) Daphnia magna on growth and stress resistance in Persian Sturgeon Larvae. J. Fish, Iranian. J. Nat. Res. Vol. 64, No. 4, pp: 345-355.
18
Mahious, A.S. and Ollevier, F., 2005. Probiotics and Prebiotics in Aquaculture: Review. 1st Regional Workshop on Techniques for Enrichment of Live Food for Use in Larviculture AAARC. Urmia, Iran.
19
Marteau, P. and Flourie, B., 2001. Tolerance to low digestible carbohydrates: symptomatology and methods. British Journal of Nutrition. Vol. 85, pp: 517-521.
20
Mazurkiewicz, J., 2009. Utilization of domestic plant components in dietsfor common carp Cyprinus carpio L. Arch. Pol. Fish. Vol. 17, pp: 5-39.
21
Ringo, E. and Vadstein, O., 1998. Colonization of Vibrio pelagius and Aeromonas caviae in early developing turbot, Scophtalmus maximus (L.) larvae. Journal of Applied Microbiologia. Vol. 84, pp: 227-233.
22
Ringo, E.; Sperstad, S.; Myklebust, R.; Mayhew, T.M. and Olsen, R.E., 2006. The effect of dietary inulin on aerobic bacteria associated with hindgut of Arctic charr (Salvelinus alpinus). Aquaculture Research. Vol. 37, pp: 891-897.
23
Ringo, E.; Dimitroglou, A.; Hoseinifar, S.H. and Davies, S.J., 2014. Prebiotics in finfish: an update. Aquaculture Nutrition: Gut Health, Probiotics and Prebiotics. Wiley Blackwell Publishing. Oxford, UK.
24
Rosental, A., 2000. Status & Prospects of Sturgeon Farming in Europe. Institute fur Meereskunde Kiel Dusternbrooker Weg 20-2300 keil. Germany. pp: 144-157.
25
Salamatdoustnobar, R.; Ghorbani, A.; Ghaem magami, S.S. and Motalebi, V., 2011. Effects of prebiotic on the fingerling rainbow trout performance parameters. World J of Fish and Marine Science. Vol. 3, No. 4, pp: 305-307.
26
ORIGINAL_ARTICLE
اثر مولتی آنزیم ناتوزیم و پروبیوتیک پدیوکوکوس اسیدی لاکتیکی در جیره غذایی بر شاخص های رشد و خون شناسی در فیل ماهی (Huso huso)
این تحقیق به منظور تعیین اثر استفاده پروبیوتیک پدیوکوکوس اسیدی لاکتیکی و مولتی آنزیم ناتوزیم در جیره غذایی بر شاخص های رشد و خون شناسی در بچه فیل ماهی به صورت طرح کاملا ً تصادفی در پنج تیمار و یک شاهد (هر یک با سه تکرار) انجام شد. پروبیوتیک و مولتی آنزیم در پنج سطح، 0/1 درصد پروبیوتیک، 0/025 درصد مولتی آنزیم، 0/05 درصد مولتی آنزیم، ترکیب پروبیوتیک (0/1 درصد) و مولتی آنزیم (0/025)، ترکیب پروبیوتیک (0/1 درصد) و مولتی آنزیم (0/05 درصد) و گروه شاهد، به جیره غذایی ماهیان افزوده و به مدت ۸ هفته تغذیه شد. شاخص های رشد (افزایش وزن، نرخ رشد ویژه، ضریب تبدیل غذایی و نسبت کارایی غذا) و فاکتورهای خون شناسی نظیر هموگلوبین، هماتوکریت، WBC،RBC ،MCV ،MCH ،MCHC اندازه گیری شد. براساس نتایج حاصل، سطح پروبیوتیک صفر و مولتی آنزیم 0/05 درصد و همین طور پروبیوتیک سطح 0/1 درصد و مولتی آنزیم سطح 0/05 درصد بر مقدار وزن نهایی، افزایش وزن، SGR و همین طور نسبت کارایی بیش ترین اثر را داشتند و نسبت به گروه شاهد تاثیر معنی داری نشان داد (0/05>P). میزان FCR درسطح پروبیوتیک 1 و مولتی آنزیم 3 کم ترین میزان را نشان داد و نسبت به گروه شاهد تاثیر معنی داری داشت (0/05>P). سطوح پروبیوتیکی و آنزیمی مختلف بر شاخص های خونی اثر معنی داری نداشتند (0/05<P). نتایج این آزمایش نشان داد که استفاده از مولتی آنزیم و پروبیوتیک می تواند بر فاکتورهای رشد ماهی تاثیر گذاشته و باعث بهبود وضعیت رشد و تغذیه فیل ماهی خاویاری گردد.
http://www.aejournal.ir/article_105255_bea9b6a88d8c2e1acd202950885941fe.pdf
2020-03-20
223
228
10.22034/aej.2020.105255
پدیوکوکوس اسیدی لاکتیکی
مولتی آنزیم ناتوزیم
رشد
شاخص های خون شناسی
فیل ماهی
مریم
موسوی
maryam.moosavi1711@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
ایمانپور
mrimanpoor53@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
رقیه
صفری
fisheriessafari@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
حمیدیان، ن.، ۱۳۹۲. ارزیابی اثرPediococcusacidilactici بر شاخص های رشد و پارامترهای خونی فیل ماهی (Husohuso). همایش ملی علوم جانوران آبزی، رشت، دانشگاه گیلان، صفحات ۲۳۱ تا ۲۴۵.
1
سهندی، ج.، ۱۳۹۲. ارزیابی تاثیر لاکتوباسیلوس های پروبیوتیکی (Bifidobacterium animalis و Bifidobacterium lactic) برعملکرد رشد لارو قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchusmykiss) در برابر استرس های محیطی. همایش ملی علوم جانوران آبزی. رشت، دانشگاه گیلان. صفحات ۲۳ تا ۳۱.
2
ضیایی نژاد، س.، ۱۳۸۲. بررسی تاثیر باکتری های باسیلوس به عنوان پروبیوتیک بر رشد، بازماندگی و تغییرات آنزیم های گوارشی در مراحل لاروی و پست لاروی میگوی سفید هندی (Fenneropeaneus indicus). پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات، دانشکده منابع طبیعی دانشگاه تهران. صفحات ۵۴ تا ۷۸.
3
ناصری، س.؛ نظامی بلوچی، ش.؛ خارا، ح.؛ فرزانفر، ع.؛ لشتو آقایی، غ. و شکوری، م.، ۱۳۸۷. بررسی عملکر رشدلارو ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) در استفاده از سطوح متفاوت پروبیوتیک و آهن مکمل شده در جیره غذایی. مجله علمی شیلات. سال 2، شماره 3، صفحات ۱ تا ۷.
4
Asadi, M.; Mirvaghefei, A.; Nematollahi, M.; Banaee, M. and Ahmadi, K., 2016. Effects of Watercress (Nasturtium nasturtium) extract on selected immunological parameters of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Open Veterinary Journal. Vol. 2, pp: 32-39.
5
Bogut, I.; Opacak, A. and Stevic, I., 1995. The Influence of Polyzymes Added to the Food on the Growth of Carp Fingerlings (Cyprinus Carpio L.). Aquaculture. Vol. 129, No. 1, pp: 252.
6
Brunt, J. and Austin B., 2005. Use of a probiotic to control lactococcosis and streptococosis in rainbow trout, (Oncorhynchus mykiss). Journal of Fish Disease. Vol. 28, pp: 693-70.
7
Castell, J.D. and Tiews, K., 1980. Report of the EIFAC, IUNS and ICES Working Group on Standardization of Methodology in Fish Nutrition research (Hamburg, Germany, 21-23 March1979). 417 p.
8
Farhangi, M. and Carter, C.G., 2007. Effect of Enzyme Supplementation to Dehulled Lupin based Diets on Growth, Feed Efficiency, Nutrient Digestibility and Carcass Composition of Rainbow Trout, Oncorhynchus Mykiss (Walbaum). Aquaculture Research. Vol. 38, No. 12, pp: 1274-1282.
9
Gatesoupe, F.J., 1999. Review: The use of probiotics in aquaculture. Aquaculture. Vol. 180, pp: 147-165.
10
Ghomi, M.R.; Shahriari, R.; Faghani Langroudi, H. and Nikoo, M., 2012. The Effects of Dietary Enzyme on Some Blood Biochemical Parameters of the Cultured Great Sturgeon Huso Huso Juveniles. Comparative Clin. Path. Vol. 21, pp: 201-204.
11
Ghosh, S.; Sinha, A. and Sahu, C., 2007. Effect of probiotic on performance in female live bearing ornamental fish. Aquaculture Research. Vol. 38, pp: 518-526.
12
Hidalgo, M.C.; Urea, E. and Sanz, A., 1999. Comparative study of digestive enzymes in fish with different nutritional habits. Proteolytic and amylase activities. Aquaculture. Vol. 170, No. 3, pp: 267-283.
13
Hoseinifar, S.H.; Mirvaghefi, A.; Merrifield, D.L.; Mojazi Amiri, B.; Yelghi, S. and Darvish Bastami, K., 2011. The Study of Some Haematological and Serum Biochemical Parameters of Juvenile Beluga (Huso Huso) Fed Oligofructose. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 37, No. 1, pp: 91-96.
14
Kennedy, S.B.; Tucker, J.W.; Thoresen, M. and Sennett, D.G., 1998. Current methodology for the use of probiotic bacteria in the culture of marine fish larvae. Aquaculture 98. World Aquaculture Society, Baton Rouge. 286 P.
15
Lin, S.; Mai, K. and Tan, B., 2007. Effects of exogenous enzyme supplementation in diets on growth and feed utilization in tilapia, Oreochromis niloticus × O. aureus. Aquaculture research. Vol. 38, No. 15, pp: 1645-1653.
16
Midilli, M., 2001. The effects of enzyme and probiotic supplementation to diets on broiler performance, Turk. J. Vet. Anim. Sci. Vol. 25, pp: 895-903.
17
Mohammadbeygi, M.; Imanpour, M.R.; Taghizadeh, V. and Shabani, A., 2013. Endo 1-3 (4) Betaglucanase supplementation of Barley Based Diet and Its Effect on Some Hematological Parameters of Common Carp. Global Veterinaria. Vol. 1, No. 3, pp: 4-13.
18
Mohanty, S.N.; Swain S.K. and Tripathi S.D., 1996. Rearing of catle (Catlacatla ham.) Spawn on formulated diets. Journal of Aquaculture in the Tropics. Vol. 11, pp: 253-258.
19
Ringe, D. and Petsko, G.A., 2008. How enzymes work. Science. New York Then Washington. Vol. 320, 5882 p.
20
Vazquez, J.A.; Gonzalez M.P. and Murado, 2005. Effects of lactic acid bacteria cultures on pathogenic microbiota from fish. Aquaculture. Vol. 245, pp: 149-161.
21
Zamini, A.; Kanani, H.; Esmaeili, A.; Ramezani, S. and Zorie Zahara, S.J., 2012. Effects of Two Dietary Exogenous Multi-Enzyme Supplementation, Natuzyme® and Beta-mannanase (Hemicell®), on Growth and Blood Parameters of Caspian Salmon (Salmo trutta Caspius). Comparative Clinical Pathology. Vol. 23, pp: 187-192.
22
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات خوراکی عصاره خشک خرفه (Portulaca oleracea) بر برخی از شاخص های رشد، کیفیت لاشه و فلور میکروبی روده بچه ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
در پژوهش حاضر اثر عصاره خشک گیاه خرفه (Portulaca oleracea) بر برخی از شاخص های رشد، آنالیز کیقیت لاشه و فلور میکروبی روده ماهی قزل آلای رنگین کمان مورد ارزیابی قرار گرفت. بدین منظور از 600 عدد ماهی قزل آلای رنگین کمان با میانگین وزنی 0/1±3/30 گرم در قالب یک طرح کاملاً تصادفی در 5 سطح شامل 0% (شاهد، T0)، 0/5% (T1)، 1% (T2) ،1/5% (T3)، و 2% (T4)، عصاره خشک خرفه در هر کیلوگرم غذا به همراه سه تکرار در 15 مخزن پلاستیکی 300 لیتری (در هر تانک 40 عدد ماهی) مورد آزمایش قرار گرفتند. نمونه برداری از ماهیان در تیمارها پس از 60 روز دوره آزمایش به صورت تصادفی ساده انجام شد. پس از نمونه برداری، برخی از شاخص های رشد (وزن و طول، ضریب تبدیل غذایی، درصد افزایش وزن بدن، ضریب رشد ویژه، شاخص وضعیت (ضریب چاقی)، درصد بازماندگی، رسوب پروتئین در بدن، نسبت بازده پروتئین، فلور میکروبی روده و آنالیز ترکیبات لاشه مورد سنجش قرار گرفت. نتایج این تحقیق نشان داد که عصاره خشک خرفه در سطح 1% موجب افزایش درصد وزن بدن و کاهش ضریب تبدیل غذایی نسبت به سایر تیمارها گردید (0/05>p). درصد بازماندگی بچه ماهی ها در تیمار 0/5% در مقایسه با دیگر تیمار ها افزایش نشان داد (0/05>p).هم چنین، شاخص وضعیت یا ضریب چاقی در تیمار 2% عصاره خشک خرفه کاهش معنی داری نسبت به سایر تیمارها نشان داد (0/05>p).از این رو، عصاره خشک خرفه در سطح 1% جهت بهبود عملکرد رشد بچه ماهی قزل آلای رنگین کمان مناسب است. میزان پروتئین لاشه در تمامی تیمارهای آزمایشی به جزء تیمار 2% عصاره خشک خرفه نسبت به تیمار شاهد افزایش داشت (0/05>p). میزان چربی لاشه در تمامی تیمارهای آزمایشی نسبت به تیمار شاهد به ویژه در تیمار 1/5% عصاره خشک خرفه کاهش نشان داد (0/05>p). میزان رطوبت لاشه به ترتیب در تیمارهای 0/5% و 1% عصاره خشک خرفه در مقایسه با دیگر تیمارها بیش تر بود (0/05>p). هم چنین مقدار خاکستر لاشه در تیمارهای 1/5% و 2% عصاره خشک خرفه بیش از سایر تیمارها بود (0/05>p). از دیگر نتایج مثبت عصاره خشک خرفه افزایش باکتری های مفید روده در تیمار 1% بود (0/05>p). در مجموع نتایج این بررسی نشان می دهد که می توان از سطح 1% عصاره خشک خرفه در ترکیب با غذا جهت بهبود عملکرد رشد و بهبود کارایی تغذیه ای در آبزیان استفاده نمود.
http://www.aejournal.ir/article_104261_22a6b0b190b350303477f609622d2a8f.pdf
2020-03-20
229
236
10.22034/aej.2020.104261
قزل آلای رنگین کمان
گیاه خرفه
شاخص های رشد
فلور میکروبی روده
آنالیز لاشه
مهدی
محمد علیخانی
m.mohammadalikhani1982@gmail.com
1
گروه شیلات، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
مهدی
شمسایی مهرجان
m.shamsaie@srbiau.ac.ir
2
گروه شیلات، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
مسعود
حقیقی
masoud126@yahoo.com
3
مرکز تحقیقات ماهیان سردآبی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تنکابن، ایران
AUTHOR
مهدی
سلطانی
msoltani@ut.ac.ir
4
گروه بهداشت و بیماریهای آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
ابولقاسم
کمالی
kamali.abolghasem@gmail.com
5
گروه شیلات، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
باﺑﺎﺧﺎﻧﻠﻮ، پ.؛ ﻣﯿﺮزا، م.؛ ﺳﻔﯿﺪﮐﻦ، ف.؛ اﺣﻤﺪی، ل.؛ ﺑﺮازﻧﺪه، م.م. و ﻋﺴﮕﺮی، ف.، 1377. ﺑﺮرﺳﯽ ﺗﺮﮐﯿﺐﻫﺎی ﺗﺸﮑﯿﻞ دﻫﻨﺪه اﺳﺎﻧﺲ زﯾﺮه ﮐﺮﻣﺎن (Bunium persicum Boiss). ﺗﺤﻘﯿﻘﺎت ﮔﯿﺎﻫﺎن داروﯾﯽ و ﻣﻌﻄﺮ. ﺟﻠﺪ 1: ﺻﻔﺤﺎت 15 تا 27.
1
بابایی، ز.؛ محسنی، م.؛ بنایی، م.؛ نعمت دوست حقی، ب. و شوکت، پ.، 1393. تأثیرعصاره گیاه ختمی (Althaea officinalis) بر بهبود توان فیزیولوژیکی ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) در مواجهه با سرب و کادمیوم. بهره برداری و پرورش آبزیان. جلد3 شماره 3، صفحات 1 تا 15.
2
رجحان، م.، 1387. دارو و درمان گیاهی. انتشارات فرهیختگان علوی. چاپ پنجم. 287 صفحه.
3
رستگاری، م.ع.، 1378. علف های هرز و روش کنترل آن ها. انتشارات مرکز نشر دانشگاهی. چاپ دوم. 120 صفحه.
4
زینلی، پ.؛ لطفی، ا.؛ نعیمی پوریونسی، ح. و جعفری آهنگری، ی.، 1391. بررسی اثر گیاه خرفه ( oleracea. L.Portulaca) بر عملکرد رشد و خصوصیات لاشه بلدرچین ژاپنی. مجله دام و طیور. جلد 1، شماره 2، صفحات 29 تا 34.
5
قربانی، م.ر.م.؛ بوجارپور، م.؛ میاحی، ج.؛ فیاضی، س.ر. و طباطبایی، و.س.ص.، 1392. تأثیر گیاه خرفه بر عملکرد و خصوصیات لاشه جوجه های گوشتی. مجله دامپزشکی ایران. جلد 9، شماره 4، صفحات 88 تا 98.
6
قربانی، م.ر.م.؛ بوجارپور، م.؛ میاحی، ج.؛ فیاضی، س.ر. و طباطبایی، و. س.ص.، 1393. تأثیر استفاده از پودر خرفه بر سیستم ایمنی، جمعیت میکروبی سکوم جوجه های گوشتی و خصوصیات لاشه جوجه های گوشتی. نشریه پژوهش های علوم دامی ایران. جلد 6، شماره 2، صفحات 150 تا 156.
7
مهدوی، س.؛ سکینه، ی.؛ فیروزبخش، ف. و خلیلی، خ.، 1393. تأثیر مکمل اسانس رازیانه (Foeniculum vulgare) بر شاخص های رشد، بازماندگی، ترکیب لاشه و فراسنجه های خونی بچه ماهی سفید دریای خزر (Rutilus frisii kutum). فصلنامه علمی پژوهشی علوم و فنون شیلات. جلد 3، شماره 3، صفحات 79 تا 90.
8
ناظریان، س.؛ قلی پورکنعانی، ح.؛ جعفریان، ح.؛ سلطانی، م. و اسماعیل ملا، ع.، 1392. تأثیر تغذیه ای پودر سیر بر شاخص های هماتولوژیک فیل ماهی (Huso huso). فصلنامه علوم تکثیر و آبزی پروری. جلد 1، شماره 3، صفحات 69 تا 71.
9
Abolaji, O.A.; Adebayo, A.H. and Odesanmi, O.S., 2007. Nutritional Qualities of three medicinal plant parts (Xylopia aethiopica, Bilighia sapida and Parinari polyandra) commonly used by pregnant woman in the western part of Nigeria. Pakistan Journal of Nutrition.Vol. 6, pp: 665-668.
10
Alishahi, M.; Ranjbar, M.M.; Ghorbanpour, M.; Peyghan, R.; Mesbah, M. and Razi Jalali, M., 2010. Effects of Dietary Aloe vera on Some Specific and Nonspecific Immunity in the Common carp (Cyprinus carpio). Int. J. Vet. Res. Vol. 3, pp: 189-195.
11
Antonella Dalle, Z.; Francesco, T. and Igino, A., 2005. The dietary inclusion of Portulaca oleracea to the diet of laying hens increases the n-3 fatty acids content and reduces the cholesterol content in the egg yolk, Italian journal of animal science. Vol. 1, pp: 1- 3.
12
Austin, B. and Austin, D., 2007. Bacterial fish pathogens: diseases of farmed and wild fish. 4th (revised) ed. Godalming: Springer Praxis.
13
AOAC. 2000. Official Methods of Analysis. 17th Edn. Association of Official Analytical Chemistry, Arlington, Virginia, USA.
14
Awad, E.; Awaad, A.S. and Esteban, M.A., 2015a. Effects of dihydroquercetin obtained from deodar (Cedrus deodara) on immune status of gilthead seabream (Sparus aurata L.). Fish amd Shellfish Immunology. Vol. 43, pp: 43-50.
15
Aydin, R. and Dogan, I., 2010. Fatty Acid Profile and cholesterol content of egg yolk from chickens fed diets supplemented with purslance (portulaca oleracea). Journal of the science of Food and Agriculture. Vol. 90, pp:1759-1763.
16
Blumenthal, M.; Goldberg, A.; Brinckmann, J.; Foster, S.; Tyler, A. and Varro, E., 2000. Herbal medicine. Integrative Medicine Communications, Newton (Mass). 2000 p.
17
Camara, R., 2017. Effects of purslane (Portulaca oleracea L.) and Shewanella putrefaciens probiotic enriched diet on gilthead seabream (Sparus aurata L.), Universidade Do Algarve, Faculdade de, Cienciase Tecnologia. 63 p.
18
Chakraborty, S.B. and Hancz, C., 2011. Application of phytochemicals as immunostimulant, antipathogenic and antistress agents in finfish culture. Aquaculture. Vol 3, pp: 103-119.
19
Dkhil, M.A.; Abdel Moniem, A.E.; AI-Quraishy, S. and Saleh,R.A., 2011. Antioxidant effect of purslane (Portulaca oleracea) and its mechanism of action J. Mechanism of action. J. Medicinal Plants Res. Vol. 5, No. 9, pp: 1589-1563.
20
Ellis, A.E., 2001. The function of teleost fish lymphocytes in relation to inflammation. Int. Journal Tissue. Vol. 8, pp: 263-270.
21
Guo, F.C.; Kwakkel, R.P.; Soede, j.; Williams, B.A. and Verstegen, M.W., 2004. Effect of a Chinese herb medicine formulation, as an alternative for antibiotics, onperformance of broilers. Br. poult. Sci. Vol. 45, No. 6, pp :793-797.
22
Guanghong, W.U.; Yuan, C.O.; Shen, M.; Tang, Y.L.; Dongm, L.I.; SUN, F.F.; Huang, C. and Han, X., 2007. Immunological and biochemical parameters in carp (Cyprinus carpio) qompesell feed ingredients for long term administration. Microb-Ecol. Vol. 44, No. 2, pp: 175-185.
23
Hagi, T.; Tanaka, D.; Iwamura, Y. and Hoshino, T., 2004. Diversity and seasonal changes in latic acid bacteria in the intestinal tract of cultured freshwater fish. Aquaculture. Vol 234, pp: 335-346.
24
Holben, W.E.; Williams, P.; Saarinen, M.; Sarkilahti, L.K. and Apaja Lahti, J.H.A., 2002.Phylog-enetic analisis of intestinal microflora indicates in novel Mycoplasma phylotype in farmed and wild salmon. Microb-Ecol. Vol. 44, No. 2, pp: 175-185.
25
Iravan, D.; Hariyadi, P. and Wijaya, H., 2003. The potency of Krokot (Portulaca oleracea) as functional food ingredients. Indonesian Food and Nutrition Progress. Vol. 10, No. 1, pp: 1-12.
26
Lartseva, L.V. and Bormotova, M., 1998. Sanitary Microbiological examination of yung sturgeon in the Volga delta, Bull. Eur. Fish Pathol. Vol. 18, No. 3, pp: 102.
27
Lakhsmi, P.T.V. and Rajalakshmi, P., 2011. Identification of phyto-components and its biologicalactivities of Aloe vera (L.) through Gas Chromatography-Mass Spectrometry. International Research Journal of Pharmacy. Vol 2, pp: 247-249.
28
Lim, Y.Y. and Quah E.P.L., 2007. Antioxidant properties of difrent cultivars of portulaca oleracea. Food Chem. Vol. 103, pp: 734-740.
29
Logambal, S.M.; Venkatalakshmi, S. and Michael, R.D., 2000. Immunostimulatory effect of leaf extract of Ocimum sanctum Linn in (Oreochromis mossambicus) (Peters). Hydrobiologia. Vol. 430, pp: 113-120.
30
Movahedian, A.; Ghannadi, A. and Vashirnia, M., 2007. Hypocholesterolemic effects of Purslane extract on serum lipids in rabbits fed with high cholesterol levels. International Journal of Pharmacology. Vol. 3, No. 3, pp: 285-289.
31
Olusola, S.E.; Emikpe, B.O. and Olaifa, F.E., 2013. The potentials of medicinal plants extracts as bioantimicrobial in aquaculture. International Journal of Medicinal and Aromatic Plants. Vol. 3, pp: 404-412.
32
Pollock, R.A.; Finlay, L.; Mondschein, W. and Modesto, R.R., 2002. Laboratory exercises in microbiology. 232 p.
33
Schuman, M., 2001. Overview of purslane edible and medicinal Herb.Nnfa today. Vol. 115, No. 6, pp: 132-145.
34
Shepherd, J. and Bromage, N., 1992. Intensive fish farming. Blackwell Scientific Publications, Oxford, England. 416 p.
35
Shalaby, A.M.; Khattab, Y.A. and Abdel Rahman, A.M., 2006. Effects of Garlic (Allium sativum) and chloramphenicol on growth performance, physiological parameters and survival of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Journal of Venomous Animals and Toxins including Tropical. Vol. 12, pp: 172-201.
36
Tekeli, A.; Kutlu, H.R.; Celik, L.; Yurdakul, E. and Avcy, A., 2008. The use of propolis as an alternative to antibiotic growth promoters in broiler diets. Proceedings of 23th Worlds Poulry Congress. Vol. 2, pp: 482-482.
37
Xie, Z.F., 2002. Classified dictionary of traditional Chinese Medicine. Foreign Language Press, Beijing, China. 1057 p.
38
Zheng, Z.L.; Tan, J.Y.W.; Liu, H.Y.; Zhou, X.H.; Xiang, X. and Wang, K.Y., 2009. Evaluation of oregano essential oil (Origanum heracleoticum L.) on growth, antioxidant effect and resistance against Aeromonas hydrophila in channel catfish (Ictalurus punctuatus). Aquaculture. Vol. 229, pp: 214-218.
39
Zar, J.H., 1999. Biostatistical analysis. Prentic Hall. (4th Edition) New Jersey. 663 p.
40
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر افزودن ویتامینC به آب در یک سازگان توأم ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) و گیاه کاهو (Lactuca sativa) و بررسی عملکردی رشد گیاه و ماهی
به منظور بررسی اثر افزودن ویتامین C به آب و تاثیر آن بر شاخص های رشد و ایمنی در قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) و گیاه کاهو(Lactuca sativa)، در یک سازگان توأم ماهی و گیاه ، تعداد 90 قطعه ماهی قزل آلای رنگین کمان 1/5±45/00 گرمی و 260 عدد نشا کاهو به شکل کاملاً تصادفی به 9 واحد آزمایشی وارد شدند. تیمارها تحت تأثیر 0، 15 و 30 میلی گرم در لیتر ویتامین C به مدت 60 روز قرار گرفتند. درصد افزایش وزن و نرخ رشد ویژه، نرخ تبدیل غذایی و نرخ کارایی پروتئین در تیمار 30 میلی گرم ویتامین C، اختلاف معنی داری را در انتهای دوره آزمایش در مقایسه با سایر تیمارها نشان داد (0/05>P). شاخص های رشد گیاه کاهو از قبیل طول برگ، عرض برگ، طول بوته، وزن تر بوته، وزن خشک بوته، طول ریشه و وزن خشک ریشه در بین تیمارها فاقد تفاوت معنی دار بود (0/05<P) اما شاخص وزن تر ریشه گیاه کاهو دارای تفاوت معنی دار بود (0/05>P). اندازه گیری شاخص های بیوشیمیایی خون ماهی نیز نشان داد با افزایش سطح 15 میلی گرم ویتامین C در هر لیتر، بیش ترین غلظت متوسط هموگلوبین داخل گلبول قرمز (MCHC) به مقدار 0/73± 34/13 گرم بر دسی لیتر خون ماهی را نشان می دهد که این مقدارنسبت به تیمارهای دیگر معنی دار بود. سایر شاخص های خونی از قبیل هماتوکریت (Hct)، حجم متوسط گلبولی (MCV)، هموگلوبین (HGB)، تعداد گلبول های قرمز (RBC) و میانگین هموگلوبین گلبولی (MCH) فاقد تفاوت معنی دار بودند (0/05<P). نتایج این آزمایش نشان داد با افزودن 15 تا 30 میلی گرم بر لیتر ویتامین C به آب، مقدار غلظت متوسط هموگلوبین داخل گلبول قرمز (MCHC)در خون ماهی تغییر می کند و رشد ماهی و گیاه نیز بیش تر می شود.
http://www.aejournal.ir/article_105266_5d1fddd2c9c589d5d3487224ada1d384.pdf
2020-03-20
237
244
10.22034/aej.2020.105266
ویتامین C
رشد گیاه کاهو
ماهی قزل آلای رنگین کمان
آکواپونیک
عرفان
سلمرودی
erfansalamroodi@ut.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
غلامرضا
رفیعی
ghrafiee@ut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
کامران
رضایی توابع
krtavabe@ut.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
Andrade, J.I.A.; Ono, E.A.; Menezes, G.C.; Brasil, E.M.; Roubach, R. and Urbinati, E.C., 2007. Influence of diets supplemented with vitamins C and E on pirarucu (Arapaima gigas) blood parameters.Comp. Biochem. Biochemistry and Physiology. Vol. 146, pp: 576-580.
1
Arab, N. and Rajabi Islami, H., 2015. Effects of dietary ascorbic acid on growth performance, body composition, and some immunological parameters of Caspian brown trout, Salmo trutta caspius. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 46, No. 5, pp: 505-518.
2
Blidariu, F. and Grozea, A., 2011. Increasing the economical efficiency and sustainability of indoor fish farming by means of aquaponics-review. Scientific Papers Animal Science and Biotechnologies. Vol. 44, No. 2, pp: 1-8.
3
Falahatkar, Bahram., 2005. The effect of dietary vitamin C on some of hematologhc biochemistry and growth indexes of great sturgeon (Huso huso). Ph.D. Thesis, Tarbiat Modaarres University, Tehran, Iran. (Persian).
4
Fracalossi, D.M.; Allen, M.E.; Nichols, D.K. and OftedaL, O.T., 1998. Oscars, Astronotus ocellatus, have a dietary requirement for viatamin C. Journal of the Nutrient. Vol. 128, pp: 1745-1751.
5
Goddard, S., 1996. Feed Management in Intensive Aquaculture. Chapman and Hall. New York, USA.
6
Goddek, S.; Delaide, B.; Mankasingh, U.; Ragnarsdottir, K.; Jijakli, H. and Thorarinsdottir, R., 2015. Challenges of Sustainable and Commercial Aquaponics. Sustainability. Vol. 7, No. 4, pp: 4199-4224.
7
Han, Y.; Wang, J.; Zhao, Z.; Chen, J.; Lu, H. and Liu, G., 2017. Fishmeal Application Induces Antibiotic Resistance Gene Propagation in Mariculture Sediment. Environmental Science and Technology. Vol. 51, No. 18, pp: 10850-10860.
8
Hancock, R.D., 2005. Improving the nutritional value of crops through enhancement of L-ascorbic acid (vitamin C) content: rationale and biotechnological opportunities. Journal of agricultural and food chemistry. Vol. 53, pp: 5248.
9
Hebb, C.D.; Castell, J.D.; Anderson, D.M. and Batt, J., 2003. Growth and feed conversion of juvenile winter flounder (Pleuronectes americanus) in relation to different proteinto-lipid levels in isocaloric diets, Aquaculture. Vol. 221, No. 1, pp: 439-449.
10
Henry, J.B., 1996. Clinical diagnosis and management by laboratory methods. Academic Press, New York. 1584 p.
11
Kitabayashi, K.; Kurata, H.; Shudo, K.; Nakamura, K. and Ishikawa, S., 1971. Studies of formula feed fokuruma prawn: I. On the relationship among glucosamine, phosphorus and calcium. Bulletin of Tokai Regional Fisheries Research Laboratory. Vol. 65, pp: 91-107.
12
Klinger, D. and Naylor, R., 2012. Searching for solutions in aquaculture: charting a sustainable course. Annual Review of Environment and Resources. Vol. 37, pp: 247-276.
13
Lennard, W.E. and Leonard, B.V., 2006. A Comparison of Three Different Hydroponic Sub-systems (gravel bed, floating and nutrient film technique) in an Aquaponic Test System. Aquaculture International. Vol. 14, No. 6, pp: 539-550.
14
Lim, C.; Klesius, P.H.; Li, M.H. and Robinson E.H., 2000. Interaction between dietary levels of iron and vitamin C on growth, hematology, immune response and resistance of channel catfish (Ictalurus punctatus) to Edwardsiella ictaluri challenge. Aquaculture. Vol. 185, pp: 313-327.
15
McMurtry, J.A. and Croft, B.A., 1997. Life-styles of phytoseiid mites and their roles in biological control. Annual Review of Entomology. Vol. 42, No. 1, pp: 291-321.
16
Menezes, G.C.; Tavares-Dias, M.; Ono, E.A.; Andrade, J.I.A.; Brasil, E.M. and Roubach, R., 2006. The influence of dietary vitamin C and E supplementation onthe physiological response of pirarucu, Arapaima gigas, in net culture. Comparative Biochemistry and Physiology.
17
Vol. 145, pp: 274-279.
18
Montero, D.; Izquierdo, M.S.; Tort, L.; Robaina, L. and Vergara, J.M., 1999. High stocking density produces crowding stress altering some physiological and biochemical parameters in gilthead seabream, Sparus aurata, juveniles. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 20, pp: 53-60.
19
Montero, D.; Tort, L.; Robaina, J.M.; Vergara, M. and Izquierdo, M.S., 2001. Low vitamin E in diet reduces stress resistance of gilthead seabream (Sparus aurata) juveniles. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 11, pp: 473-490.
20
Montero, D.M.; Marrero, M.S.; Izquierdo, L.; Robaina, J.; Vergara, M. and Tort, L., 1999. Effect of vitamin E and C dietary supplementation on some immune parameters of gilthead seabream (Sparus aurata) juveniles subjected to crowding stress. Aquaculture. Vol. 171, pp: 269-278.
21
Mulabagal, V.; Ngouajio, M.; Nair, A.; Zhang, Y.; Gottumukkala, A. and Nair, M., 2010. In vitro evaluation of red and green lettuce (Lactuca sativa) for functional food properties. Food Chemistry Journal Vol. 118, pp: 300-306.
22
Nsonga, A., 2009. Effect of varying levels of dietary vitamin C (ascorbic acid) on growth, survival and hematology of juvenile tilapia, Oreochromis karongae reared in aquaria. Brazilian Journal of Aquatic Science and Technology. Vol. 13, pp: 17-23.
23
Qinghui, A.; Mai, K.; Tan, B.; Xu, W.; Zhang, W. and Hongming, M., 2006. Effects of dietary vitamin C on survival, growth, and immunity of large yellow croaker, Pseudosciaena crocea. Aquaculture. Vol. 261, pp: 327-336.
24
Rafiee, G. and Saad, C.R., 2005. Nutrient cycle and sludge production during different stages of red tilapia (Oreochromis sp.) growth in a recirculating aquaculture system. Aquaculture. Vol. 244, No. 1-4, pp: 109-118.
25
Rakocy, J.; Shultz, R.C.; Bailey, D.S. and Thoman, E.S., 2003. Aquaponic production of tilapia and basil: comparing a batch and staggered cropping system. In South Pacific Soilless Culture Conference-SPSCC. Vol. 648, pp: 63-69.
26
Rakocy, J.E., Baily, D.S., Martin, J.M. and Shultz, K.A., 2000. Tilapia production systems for the Lesser Antilles and other resource-limited, tropical area. Tilapia Aquaculture in the 21st century, Proceeding from the fifth International Symposium on Tilapia Aquaculture. pp: 651-662.
27
Ross, L.G. and Ross, B., 1999. Anasthetic and Sedative Techniques for Aquatic Animals. 2nd Eddition. Blackwell Science, Oxford, UK. ISBN: 0-63205252X. 176 p.
28
Sandnes, K.; Ulgenes, Y.; Braekkan, O.R. and Utne, F., 1994. The effect of ascorbic acid supplementation in broodstock feed on reproduction of rainbow trout (Salmo gairdneri). Aquaculture. Vol. 43, pp: 167-177.
29
Sarma, K.; Pal, A.K.; Sahu, N.P.; Ayyappan, S. and Baruah, K., 2009. Dietary high protein and vitamin C mitigates endosulfan toxicity in the spotted murrel, Channa punctatus (Bloch, 1793). Science of the Total Environment. Vol. 407, No. 12, pp: 3668-3673.
30
Stickney, R.R., 2000. Encyclopedia of Aquaculture. John Wiley and Sons, Inc. New York, USA.
31
Tatina, M.; Bahmani, M.; Soltani, M. and Gharibkhani, M., 2011. Effects of Different level of dietary vitamin C and E on Adult farmed Sterlet sturgeon (Acipenser ruthenus) Plasma cholesterol. Journal of the Animal Biology. Vol. 1, pp: 21-31.
32
Torrecillas, S.; Makol, A.; Caballero, M.J.; Montero, D.; Gines, R.; Sweetman, J. and zquierdo, M.S., 2011. Improved feed utilization, intestinal mucus production and immune parameters in sea bass (Dicentrarchus labrax) fed mannan oligosaccharides (MOS). Aquaculture Nutrition. Vol. 17, pp: 223-233.
33
Trenzado, C.E.; Morales, A.E. and Higuera, M.L., 2006. Physiological effects of crowding in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss, selected for low and high stress responsiveness. Aquaculture. Vol. 258, pp: 583-593.
34
Wang, X.; Kima, K.W.; Bai, S.C.; Huh, M.D. and Cho, B.Y., 2003. Effects of the different levels of dietary vitamin C on growth and tissue ascorbic acid changes in parrot fish (Oplegnathus fasciatus). Aquaculture. Vol. 215, pp: 203-211.
35
Zhou, Q.; Wang, L.; Wang, H.; Xie, F. and Wang, T., 2012. Effect of dietary vitamin C on the growth performance and innate immunity of juvenile cobia (Rachycentron canadum). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 32, pp: 969-975.
36
Zou, Y.; Hu, Z.; Zhang, J.; Xie H.; Liang, S.; Wang, J. and Yan, R., 2016. Attempts to improve nitrogen utilization efficiency of aquaponics through nitrifies addition and filler gradation. Environmental Science and Pollution Research. Vol. 23, No. 7, pp: 6671-6679.
37
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی فعالیت ضدمیکروبی سویه باکتریاییLactococcus lactis subsp. cremoris NABRII66 جداسازی شده از روده ماهی قزلآلای رنگینکمان
این مطالعه با هدف بررسی فعالیت ضدمیکروبی سویه باکتریایی اسیدلاکتیک Lactococcus lactis subsp. cremoris NABRII66 علیه عوامل باکتریایی بیماریزای شایع در آبزیپروری و انسان توسط آزمایشهای in vitro انجام شد. L. lactis subsp. cremoris NABRII66 از روده ماهی قزلآلای رنگینکمان جداسازی شده بود. به منظور بررسی فعالیت ضدمیکروبی سویه باکتریایی منتخب علیه عوامل بیماریزای باکتریایی تاثیرگذار بر آزادماهیان و سایر گونههای ماهیان شامل L.garvieae ، Aeromonas salmonicida و دو عامل بیماریزای دیگر شامل Escherichia coliوStaphylococcus aureus به عنوان دو منبع شایع عفونت انسانی، از دو روش آگار دولایه و میکروتیتر پلیت استفاده شد. نتایج روش آگار دولایه، فعالیت ضدمیکروبی سویه باکتریایی L. lactis subsp. cremoris NABRII66 را علیه تمامی عوامل بیماریزا نشان داد و بیش ترین اثر معنیدار بازدارندگی بر مهار رشد باکتریهای بیماریزای A. salmonicida و S. aureus مشاهده گردید (0/05>p). هم چنین، نتایج تست میکروتیتر پلیت نشان داد که سوپرناتانت فاقد سلول سویه باکتریایی L. lactis subsp. cremoris NABRII66 به طور معنیداری قادر به مهار رشد باکتری A. salmonicida بود (0/05>p). این مطالعه نشان داد که سویه باکتریایی L. lactis subsp. cremoris NABRII66 جداسازی شده از روده ماهی قزلآلای رنگین کمان، دارای پتانسیل ضدمیکروبی علیه چهار عامل باکتریایی بیماریزای شایع توسط تولید برخی ترکیبات برونسلولی بوده که باید در مطالعات بعدی مورد ارزیابی قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_105268_44567d7b406a68bd9ab97dd5b22f3387.pdf
2020-03-20
245
250
10.22034/aej.2020.105268
آبزیپروری
باکتریهای اسیدلاکتیک
عوامل بیماریزای باکتریایی
فعالیت ضدمیکروبی
قزلآلای رنگینکمان
فائزه
مرتضایی
mortezaei@msc.guilan.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
مریم
رویان
m.royan@abrii.ac.ir
2
مدیریت شمال کشور، پژوهشکده بیوتکنولوژی کشاورزی ایران، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
LEAD_AUTHOR
آریا
باباخانی
aria_babakhani@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
رامین
صیقلانی
raminseighalani@abrii.ac.ir
4
مدیریت شمال کشور، پژوهشکده بیوتکنولوژی کشاورزی ایران، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
مرتضائی، ف.؛ رویان، م.؛ علاف نویریان، ح. و باباخانی، آ.، 1397. بررسی پتانسیل پروبیوتیکی باکتریهای اسیدلاکتیک جداسازی شده از روده ماهی قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss, Walbaum) علیه باکتری Streptococcus iniae. مجله علوم آبزیپروری، دوره 6، شماره 3، صفحات 43 تا 54.
1
Abee, T.; Krockel, L. and Hill, C., 1995. Bacteriocins: Mode of action and potentials in 266 food preservation and control of food poisoning. International Journal of Food Microbiology. Vol. 28, pp: 169-185.
2
Akçelik, O.; Tükel, Ç.; Özcengiz, G. and Akçelik, M., 2006. Characterization of bacteriocins from two Lactococcus lactis subsp. lactis isolates. Molecular Nutrition and Food Research. Vol. 50, No. 3, pp: 306-313.
3
Amin, M.; Adams, M.; Bolch, C.J. and Burke, C.M., 2017. In vitro screening of lactic acid bacteria isolated from gastrointestinal tract of Atlantic Salmon (Salmo salar) as probiont candidates. Aquaculture International. Vol. 25, No. 1, pp: 485-498.
4
Austin, B. and Austin, D.A., 2016. Bacterial fish pathogens: disease of farmed and wild fish, 6th edn. Springer, Dordrecht. 552 p.
5
Balcázar, J.L.; De Blas, I.; Ruiz-Zarzuela, I.; Vendrell, D.; Dolores Evora, M. and Luis Múzquiz, J., 2006. Growth inhibition of Aeromonas species by lactic acid bacteria isolated from salmonids. Microbial Ecology in Health and Disease. Vol. 18, No. 1, pp: 61-63.
6
Balcázar, J. L.; Vendrell, D.; De Blas, I.; Ruiz-Zarzuela, I.; Gironés, O. and Múzquiz, J. L., 2007. In vitro competitive adhesion and production of antagonistic compounds by lactic acid bacteria against fish pathogens. Veterinary Microbiology. Vol. 122, No. 3, pp: 373-380.
7
Balcázar, J.L.; Vendrell, D.; de Blas, I.; Ruiz-Zarzuela, I.; Muzquiz, J.L. and Girones, O., 2008. Characterization of probiotic properties of lactic acid bacteria isolated from intestinal microbiota of fish. Aquaculture. Vol. 278, No. 4, pp: 188-191.
8
Bromberg, R.; Moreno, I.; Delboni, R.R.; Cintra, H.C. and Oliveira, P.V., 2005. Characteristics of the bacteriocin produced by Lactococcus lactis subsp. cremoris CTC 204 and the effect of this compound on the mesophilic bacteria associated with raw beef. World Journal of Microbiology and Biotechnology. Vol. 21, No. 3, pp: 351-358.
9
Choi, H.J.; Cheigh, C.I.; Kim, S.B. and Pyun, Y.R., 2000. Production of a nisin-like 282 bacteriocin by Lactococcus lactis subsp. lactis A isolated from kimchi. Journal of Applied Microbiology. Vol. 88, pp: 563-571.
10
Cleveland, J.; Montville, T.J.; Nes, I.F. and Chikindas, M.L., 2001. Bacteriocins: safe, natural antimicrobials for food preservation. International Journal of Food Microbiology. Vol. 71, No. 1, pp: 1-20.
11
Cosentino, S.; Fadda, M.E.; Deplano, M.; Melis, R.; Pomata, R. and Pisano, M.B., 2012. Antilisterial activity of nisin-like bacteriocin-producing Lactococcus lactis subsp. lactis isolated from traditional Sardinian dairy products. J of Biomedicine and Biotechnology. Vol. 10, pp: 1155-1163.
12
Didinen, B.I.; Onuk, E.E.; Metin, S. and Cayli, O., 2018. Identification and characterization of lactic acid bacteria isolated from rainbow trout with inhibitory activity against Vagococcus salmoninarum and Lactococcus garvieae. Aquaculture Nutrition. Vol. 24, No. 1, pp: 400-407.
13
Frick, J.S.; Schenk, K.; Quitadamo, M.; Kahl, F.; Köberle, M.; Bohn, E.; Aepfelbacher, M. and Autenrieth, I.B., 2007. Lactobacillus fermentum attenuates the proinflammatory effect of Yersinia enterocolitica on human epithelial cells. Inflammatory Bowel Diseases. Vol. 13, No. 1, pp: 83-90.
14
Ghanbari, M.; Kneifel, W. and Domig, K.J., 2015. A new view of the fish gut microbiome: advances from next-generation sequencing. Aquaculture. Vol. 448, pp: 464-475.
15
Gildberg, A.; Mikkelsen, H.; Sandaker. E. and Ringø, E., 1997. Probiotic effect of lactic acid bacteria in the feed on growth and survival of fry of Atlantic cod (Gadus morhua). Hydrobiologia. Vol. 352, pp: 279-285.
16
Gonçalves, A.T. and Gallardo‐Escárate, C., 2017. Microbiome dynamic modulation through functional diets based on pre and probiotics (mannan‐oligosaccharides and Saccharomyces cerevisiae) in juvenile rainbow trout. Journal of Applied Microbiology. Vol. 122, No. 5, pp: 1333-1347.
17
Itoi, S.; Yuasa, K.; Washio, S.; Abe, T.; Ikuno, E. and Sugita, H., 2009. Phenotypic variation in Lactococcus lactis subsp. lactis isolates derived from intestinal tracts of marine and freshwater fish. Journal of Applied Microbiology. Vol. 107, No. 3, pp: 867-874.
18
Kumar, P.; Jain, K.K.; Sardar, P.; Jayant, M. and Tok, N.C., 2018. Effect of dietary synbiotic on growth performance, body composition, digestive enzyme activity and gut microbiota in Cirrhinus mrigala finger lings. Aquaculture Nutrition. Vol, 24. No. 3, pp: 921-929.
19
Llewellyn, M.S.; Boutin, S.; Hoseinifar, S.H. and Derome, N., 2014. Teleost microbiomes: the state of the art in their characterization, manipulation and importance in aquaculture and fisheries. Frontiers in Microbiology. Vol. 5, 207 p.
20
Merrifield, D.L.; Harper, G.; Mustafa, S.; Carnevali, O.; Picchietti, S. and Davies, S.J., 2011. Effect of dietary alginic acid on juvenile tilapia intestinal microbial balance, intestinal histology and growth performance. Cell and Tissue Research. Vol. 344, pp: 135-146.
21
Merrifield, D.L. and Rodiles, A., 2015. The fish microbiome and its interactions with mucosal tissues. In Mucosal health in aquaculture. Academic, Oxford, UK. pp: 273-295.
22
Moreno, I.; Lerayer, A.L.; Baldini, V.L. and Leitão, M.F.D.F., 2000. Characterization of bacteriocins produced by Lactococcus lactis strains. Brazilian Journal of Microbiology. Vol. 31, No. 3, pp: 183-191.
23
Mukherjee, A.; Dutta, D.; Banerjee, S.; Ringø, E.; Breines, E.M.; Hareide, E.; Chandra, G. and Ghosh, K., 2017. Culturable autochthonous gut bacteria in rohu, Labeo rohita. In vitro growth inhibition against pathogenic Aeromonas spp., stability in gut, bio-safety and identification by 16S rRNA gene sequencing. Symbiosis, Vol. 73, No. 3, pp: 165-177.
24
Nikoskelainen, S.; Salminen, S.; Bylund, G. and Ouwehand, A.C., 2001. Characterization of the properties of human and dairy-derived probiotics for prevention of infectious diseases in fish. Applied and Environmental Microbiology. Vol. 67, No. 6, pp: 2430-2435.
25
Pérez, T.; Balcázar, J.L.; Peix, A.; Valverde, A.; Velázquez, E.; de Blas, I. and Ruiz Zarzuela, I., 2011. Lactococcus lactis spp. tructae subsp. nov. isolated from the intestinal mucus of brown trout (Salmo trutta) and rainbow trout International Journal of Systematic and Evolutionary Microbiology. Vol. 61, pp: 1894-1898.
26
Pérez-Sánchez, T.; Ruiz-Zarzuela, I.; de Blas, I. and Balcázar, J.L., 2014. Probiotics in aquaculture: a current assessment. Reviews in Aquaculture. Vol. 6, pp: 133-146.
27
Rengpipat, S.; Rueangruklikhit, T. and Piyatiratitivorakul, S., 2008. Evaluations of lactic acid bacteria as probiotics for juvenile seabass Lates calcarifer. Aquaculture Research. Vol. 39, pp: 134-143.
28
Ringø, E., 2008. The ability of carnobacteria isolated from fish intestine to inhibit growth of fish pathogenic bacteria: a screening study. Aquaculture Resea. Vol. 39, pp: 171-180.
29
Rodriguez, J.M.; Cintas, L.M.; Casaus, P.; Horn, N.; Dodd, H.M.; Hernandez, P.E. and Gasson, M.J., 1995. Isolation of nisin-producing Lactococcus lactis strains from dry fermented sausages. Journal of Applied Bacteriology. Vol. 78, pp: 109-115.
30
Rossland, E.; Langsrud, T.; Granum, P.E. and Sorhaug, T., 2005. Production of antimicrobial metabolites by strains of Lactobacillus or Lactococcus co-cultured with Bacillus cereus in milk. International Journal of Food Microbiology. Vol. 98, pp: 193-200.
31
Schillinger, U., 1990. Bacteriocins of lactic acid bacteria. In Biotechnology and Food Safety. Edited by DD Bills and SD Kung. Butterworth-Heinemann, Boston, USA. pp: 55-74.
32
Tejero-Sariñena, S.; Barlow, J.; Costabile, A.; Gibson, G.R. and Rowland, I., 2012. In vitro evaluation of the antimicrobial activity of a range of probiotics against pathogens: evidence for the effects of organic acids. Anaerobe. Vol. 18, No. 5, pp: 530-538.
33
Vázquez, J.A.; González, M.P. and Murado, M.A., 2004. Pediocin production by Pediococcus acidilactici in solid state culture on a waste medium: Process simulation and experimental results. Biotechnology & Bioengineering. Vol. 85, No. 6, pp: 676-682.
34
Zhou, X.; Wang, Y.; Yao, J. and Li, W., 2010. Inhibition ability of probiotic, Lactococcus lactis, against A. hydrophila and study of its immunostimulatory effect in tilapia. International Journal of Engineering, Science and Technology. Vol. 2, No. 7, pp: 73-80.
35
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات مسمومیت تجربی با کلرپیریفوس بر ایمنی غیراختصاصی و مصونیت در برابر عفونت آئرومونازیس (Aeromonasis) در قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
آفت کش های ارگانوفسفره یکی از آلاینده های شیمیایی آب های سطحی هستند که ممکن است موجب افزایش استعداد ابتلا به بیماری در ماهیان شوند. از این رو در آزمایش حاضر اثرات مسمومیت تحت حاد کلرپیریفوس بر عملکرد سیستم ایمنی و مقاومت قزل آلای رنگین کمان در مواجه با عفونت آئرومونازیس مورد ارزیابی قرار گرفت. تعداد 180 ماهی با میانگین وزن 42 گرم بین 4 گروه آزمایشی (3 تکرار) شاهد، دوز پایین (2/5 میکروگرم بر لیتر)، دوز متوسط (5 میکروگرم بر لیتر) و دوز بالای کلرپیریفوس (10 میکروگرم بر لیتر) تقسیم شدند و به مدت 10 روز تحت تاثیر تیمارهای فوق قرار گرفتند. در پایان، خونگیری جهت سنجش شاخص های خون شناسی و ایمنی انجام شد و ماهیان به وسیله تزریق درون صفاقی دوز کشنده Aeromonas hydrophila به مدت 14 روز تحت چالش باکتریایی قرار گرفتند. بررسی شاخص های خون شناسی، نشان دهنده کاهش معنی دار تعداد گلبول های سفید، گلبول های قرمز، هماتوکریت، هموگلوبین و درصد لنفوسیت های خون در ماهیان تحت تیمار با بالاترین دوز کلرپیریفوس بود (0/05>P). ارزیابی شاخص های ایمنی خون گواه از کاهش معنی دار ایمونوگلوبیولین تام، لیزوزیم، کمپلمان، پروتئین کل، آلبومین و گلوبولین در بالاترین دوز کلرپیریفوس بود (0/05>P). میزان مرگ و میر تجمعی ماهیان در چالش با Aeromonas hydrophila رابطه مستقیمی با افزایش دوز کلرپیریفوس نشان داد اما فقط گروه آزمایشی بالاترین دوز با گروه شاهد اختلاف معنی دار نشان داد (0/05>P). با توجه به نتایج حاصل از این آزمایش، این چنین استنباط می شود که افزایش غلظت محیطی کلرپیریفوس موجب اثرات زیان آور بر سیستم دفاعی قزل آلای رنگین کمان می شود و مقاومت آن را در مواجه با باکتری های بیماریزا کاهش می دهد.
http://www.aejournal.ir/article_105278_ba71e3f17dc8022c85b9da12bf50f663.pdf
2020-03-20
251
260
10.22034/aej.2020.105278
کلرپیریفوس
قزل آلای رنگین کمان
آئرومونازیس
ایمنی غیر اختصاصی
سعید
مرادی
s71moradi@ut.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
کامران
رضایی توابع
krtavabe@ut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
آهنگرزاده، م.؛ قربانپور نجف آبادی، م.؛ پیغان، ر.؛ شریفروحانی، م. و سلطانی، م.، 1394. نقش آئروموناس هیدروفیلا در سپتیسمیهای باکتریایی کپور ماهیان پرورشی استان خوزستان. مجله دامپزشکی ایران. دوره 11، شماره 3، صفحات 5 تا 16.
1
احمدی، ک.؛ میرواقفی، ع.؛ بنایی، م. و موسوی، م.، 1390. مطالعه فاکتورهای خونی و آسیب شناسی بافتی ناشی از آئروموناس هیدروفیلا (Aeromonas hydrophila) در قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). شیلات (مجله منابع طبیعی). دوره 64، شماره 3، صفحات 217 تا 227.
2
اسدی، ط.؛ زنگویی، ن.؛ موسوی، س.م.؛ ذاکری، م. و بتوندی، ز.، 1394. اثرات ضدمیکروبی عصاره الکلی زنجبیل (Zingiber officinale) بر برخی باکتری های بیماریزای آبزیان. پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. دوره 3، شماره 2، صفحات 59 تا 67.
3
اکبری، پ. و یونسی، آ.، 1396. تاثیر مکمل غذایی کیتوزان بر رشد، خون شناسی، بیوشیمی سرم خون و ایمنی ذاتی ماهی کفال خاکستری (Mugil cephalus). مجله تحقیقات دامپزشکی و فرآورده های بیولوژیک. دوره 30، شماره 3، صفحات 194 تا 203.
4
اسفندیار، ف.؛ فیروزبخش، ف.؛ رحمانی، ح. و جانی خلیلی، خ.، 1395. بررسی اثرات غلظت های تحت کشنده کلرپیریفوس بر فعالیت آنزیمهای سرمی و برخی شاخصهای استرس اکسیداتیو ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله شیلات.دوره 69، شماره 3، صفحات 229 تا 307.
5
پاک روان، س. و اکبرزاده، آرش.، 1396. مروری بر مکانیسم های مولکولی بیماریزایی باکتری آئروموناس هیدروفیلا در آبزیان و چگونگی عملکرد آنتی بیوتیک تتراسایکلین در مقابله با آن. مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 6، شماره 4، صفحات 1 تا 9.
6
جادی، ع.؛ صفاهیه، ع.؛ موحدینیا، ع.؛ دژندیان، سهراب.؛ حلاجیان، ع. و هاشمی، ر.س.، 1395. مطالعه سمیت تحت کشنده آفت کش ارگانوفسفره دیازینون بر برخی پارامترهای خونی بچه ماهی سیم دریای خزر. مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 71، شماره 1، صفحات 17 تا 25.
7
خارا، ح.؛ محمدزاده، و.؛ قیاسی، م. و رهبر، م.، 1392. بررسی برخی از فاکتورهای بیوشیمیایی و سرمی خون ماهیان قزل آلای رنگین کمان فاقد و واجد عفونت باکتریایی. مجله توسعه آبزی پروری. دوره 7، شماره 2، صفحات 17 تا 23.
8
خدادادی، م.؛ صمدی، م.؛ رحمانی، ع.؛ ملکی، ر.، اله رسانی، ع. و شهیدی، ر.، 1388. بررسی غلظت باقی مانده سموم آفتکش ارگانو فسفره و کاربامات در منابع تامین آب آشامیدنی شهر همدان در سال 1386. نشریه سلامت و محیط زیست. دوره 2، شماره 4، صفحات 250 تا 257.
9
راضی جلالی، م. و خواجه، غ.، 1383. روشها و مفاهیم خون شناسی برای تکنسینهای دامپزشکی. انتشارات دانشگاه شهید چمران. 190 صفحه.
10
رفیعیان، ش.؛ آموزگار، م.ع.؛ شوندی، م.؛ کاظمی، ح. و بامروت، م.، 1397. ارزیابی تجزیه زیستی آفتکشهای ارگانو فسفاته توسط باکتریهای نمکدوست. مجله زیست شناسی میکروارگانیسم ها. دوره 7، شماره 25، صفحات 1 تا 17.
11
سعیدی فر، م.؛ وهاب زاده رودسری، ح.؛ زمینی، ع. و کاظمی، ر.، 1391. تاثیر آفت کش دیازینون بر رفتار و برخی شاخص های خونی بچه ماهیان قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله شیلات. دوره 6، شماره 1، صفحات95 تا 106.
12
عطایی مهر، ب.؛ باقری، پ.؛ امتیازجو، م. و یوسفی سیاه کلرودی، س.،1393. بررسی اثر گیاه آلوئه ورا بر تغییرات میزان ایمونوگلوبولین های IgM، IgA و IgG پروتئین کل و شمارش تفریقی گلبول های سفید ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله پژوهش های جانوری (زیست شناسی جانوران). دوره 27، شماره 1، صفحات 89 تا 99.
13
غفاری فارسانی، ح.؛ هدایتی، س.ع.ا.؛ زارع ندیمی بین، ن.؛ عزیز پور، س. و شهبازی ناصرآباد، س.، 1395. بررسی تاثیر غلظت های تحت کشنده سم مالاتیون بر پارامترهای خون شناسی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). نشریه اقیانوس شناسی. دوره 27، شماره 7، صفحات 1 تا 9.
14
فرخی، ف.؛ جمیلی، ش.؛ شهیدی، م.؛ ماشینچیان، ع. و وثوقی، غ.، 1394. بررسی تاثیر حشرهکش مالاتیون بر بافت و آنزیم های کبدی ماهی کلمه دریای خزر (Rutilus rutilus caspicus). مجله علمی شیلات ایران. دوره24، شماره 4، صفحات 117 تا 126.
15
فرمان زاده، د. و رضایی نژاد، ح.، 1396. جذب آفتکشهای اورگانو فسفره پاراتیون و کلرپیریفوس با نانولولههای بور نیترید دوپه شده با آهن، یک مطالعه نظری. مجله شیمى کاربردى. دوره 12، شماره 44، صفحات 215 تا 232.
16
فوقانی، ا.؛ شمسایی مهرجان، م. و حق بیان، س.، 1392. اثر سم آفلاتوکسین بر پارامترهای خونی قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchud mykiss). مجله تحقیقات منابع طبیعی تجدید شونده. دوره 4، شماره 4، صفحات 45 تا 56.
17
نقشبندی، ن. و عسکری حصنی، م.، 1396. تاثیر سم ارگانو فسفره کلرپیریفوس بر تغییرات هورمونهای تیروییدی ماهی کپور علفخوار (Ctenopharyngodon idellus). نشریه فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان. دوره 5، شماره 2، صفحات 19 تا 34.
18
نوریان، م.؛ شجیعی، ه. و محمدنژادشموشکی، م.، 1393. تاثیر سم دیازینون بر روی فاکتورهای خونی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله زیست شناسی جانوری. دوره 7، شماره 2، صفحات 99 تا 106.
19
Abhijith, B.D.; Ramesh, M. and Poopal, R.K., 2012. Sublethal toxicological evaluation of methyl parathion on some haematological and biochemical parameters in an Indian major carp Catla catla. Comparative Clinical Pathology. Vol. 21, pp: 55-61.
20
Agrahari, S.; Pandey, K.C. and Gopal, K., 2007. Biochemical alteration induced by monocrotophos in the blood plasma of fish, Channa punctatus (Bloch). Pesticide Biochemistry and Physiology. Vol. 88, pp: 268-272.
21
Ahmadi, K.; Mirvaghefei, A.R.; Banaee, M. and Vosoghei, A.R., 2014. Effects of long-term diazinon exposure on some immunological and haematological parameters in rainbow trout Oncorhynchus mykiss (Walbaum, 1792). Toxicology and Environmental Health Sciences. Vol. 6, pp: 1-7.
22
Amar, E.C.; Kiron, V.; Satoh, S.; Okamoto, N. and Watanabe, T., 2000. Effects of dietary βcarotene on the immune response of rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Fisheries Science. Vol. 66, pp: 1068-1075.
23
Amirkhani, N. and Firouzbakhsh, F., 2015. Protective effects of basil (Ocimum basilicum) ethanolic extract supplementation diets against experimental Aeromonas hydrophila infection in common carp (Cyprinus carpio). Aquaculture Research. Vol. 46, pp: 716-724.
24
Banaee, M.; Sureda, A.; Mirvaghefi, A.R. and Ahmadi, K., 2011. Effects of diazinon on biochemical parameters of blood in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Pesticide biochemistry and physiology. Vol. 99, pp: 1-6.
25
Benejam, L.; Benito, J. and García-Berthou, E., 2010. Decreases in condition and fecundity of freshwater fishes in a highly polluted reservoir. Water, Air, & Soil Pollution. Vol. 210, pp: 231-242.
26
Burtis, C.A. and Ashwood, E.R., 1999. Tietz textbook of clinical chemistry. pp: 676-716.
27
Deb, N. and Das, S., 2013. Chlorpyrifos toxicity in fish: a review. Current World Environment. Vol. 8, pp: 77-84.
28
Dietrich, J.P.; Van, Gaest A.L.; Strickland, S.A. and Arkoosh, M.R., 2014. The impact of temperature stress and pesticide exposure on mortality and disease susceptibility of endangered Pacific salmon. Chemosphere. Vol. 108, pp: 353-359.
29
Dogan, D. and Can, C., 2011. Endocrine disruption and altered biochemical indices in male Oncorhynchus mykiss in response to dimethoate. Pesticide biochemistry and physiology. Vol. 99, pp: 157-161.
30
Dorafshan, S.; Kalbassi, M.R.; Pourkazemi, M.; Amiri, B.M. and Karimi, S.S., 2008. Effects of triploidy on the Caspian salmon Salmo trutta caspius haematology. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 34, pp: 195-200.
31
Ellis, A.E.; Stolen, J.S.; Fletcher, T.C.; Anderson, D.P.; Robertson, B.S. and Van Muiswinkel, W.B., 1990. Lysozyme assay in techniques in fish immunology. Technique in Fish Immunology. USA, pp: 101-103.
32
Fečkaninová, A.; Koščová, J.; Mudroňová, D.; Popelka, P. and Toropilova, J., 2017. The use of probiotic bacteria against Aeromonas infections in salmonid aquaculture. Aquaculture. Vol. 469, pp: 1-8.
33
Feldman, B.F.; Zinkl, J.G. and Jain, N.C., 2000. Schalm's Veterinary Hematology 5th ed. Lippincott Williams & Wilkins. pp: 1120-1124.
34
Galal, A.A.; Reda, R.M. and Mohamed, A.A.R., 2018. Influences of Chlorella vulgaris dietary supplementation on growth performance, hematology, immune response and disease resistance in Oreochromis niloticus exposed to sub-lethal concentrations of penoxsulam herbicide. Fish & shellfish immunology. Vol. 77, pp: 445-456.
35
Gobi, N.; Vaseeharan, B.; Chen, J.C.; Rekha, R.; Vijayakumar, S.; Anjugam, M. and Iswarya, A., 2018. Dietary supplementation of probiotic Bacillus licheniformis Dahb1 improves growth performance, mucus and serum immune parameters, antioxidant enzyme activity as well as resistance against Aeromonas hydrophila in tilapia Oreochromis mossambicus. Fish & shellfish immunology. Vol. 74, pp: 501-508.
36
Hebb, C.D.; Castell, J.D.; Anderson, D.M. and Batt, J., 2003. Growth and feed conversion of juvenile winter flounder (Pleuronectes americanus) in relation to different protein-to-lipid levels in isocaloric diets. Aquaculture. Vol. 221, pp: 439-449.
37
Houston, A.H.; Dobric, N. and Kahurananga, R., 1996. The nature of hematological response in fish. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 15, pp: 339-347.
38
http://www.fao.org.fileadmin/templates/agphome/documents/Pests_Pesticides/Specs/Chlorpyrifos_2015_08.pdf
39
Ibrahim, A.T.A. and Harabawy, A.S., 2014. Sublethal toxicity of carbofuran on the African catfish Clarias gariepinus: Hormonal, enzymatic and antioxidant responses. Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 106, pp: 33-39.
40
Koller, A. and Kaplan, L.A., 1984. Total serum protein. In Clinical Chemistry, Theory, Analysis and Correlation. Mosby Company, St Louis, LO. pp: 1316-1319.
41
Köllner, B.; Wasserrab, B.; Kotterba, G. and Fischer, U., 2002. Evaluation of immune functions of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) how can environmental influences be detected? Toxicology letters. Vol. 131, pp: 83-95.
42
LaPatra, S.E.; Plant, K.P.; Alcorn, S.; Ostland, V. and Winton, J., 2010. An experimental vaccine against Aeromonas hydrophila can induce protection in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Journal of fish diseases. Vol. 33, pp: 143-151.
43
Modesto, K.A. and Martinez, C.B., 2010. Effects of Roundup Transorb on fish: hematology, antioxidant defenses and acetylcholinesterase activity. Chemosphere. Vol. 81, pp: 781-787.
44
Narra, M.R.; Rajender, K.; Reddy, R.R.; Rao, J.V. and Begum, G., 2015. The role of vitamin C as antioxidant in protection of biochemical and haematological stress induced by chlorpyrifos in freshwater fish Clarias batrachus. Chemosphere. Vol. 132, pp: 172-178.
45
Panigrahi, A.; Kiron, V.; Puangkaew, J.; Kobayashi, T.; Satoh, S. and Sugita, H., 2005. The viability of probiotic bacteria as a factor influencing the immune response in rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Aquaculture. Vol. 243, pp: 241-254.
46
Řehulka, J., 2000. Influence of astaxanthin on growth rate, condition, and some blood indices of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Aquaculture. Vol. 190, pp: 27-47.
47
Shelley, L.K.; Ross, P.S.; Miller, K.M.; Kaukinen, K.H. and Kennedy, C.J., 2012. Toxicity of atrazine and nonylphenol in juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): effects on general health, disease susceptibility and gene expression. Aquatic toxicology. Vol. 124, pp: 217-226.
48
Siwicki, A.K. and Anderson, D.P., 1993. Immuno stimulation in fish: measuring the effects of stimulants by serological and immunological methods. US Fish Wildl Service-IFI. Vol. 1, pp: 1-17.
49
Thomas, L., 1998. Clinical laboratory diagnostics 1ST ed Frankfurt TH. pp: 231-241.
50
Tripathi, G. and Shasmal, J., 2011. Concentration related responses of chlorpyriphos in antioxidant, anaerobic and protein synthesizing machinery of the freshwater fish, Heteropneustes fossilis. Pesticide biochemistry and physiology. Vol. 99, pp: 215-220.
51
Yano, T., 1992. Assays of hemolytic complement activity. Techniques in fish immunology, SOS Publication, Fair Haven, Nj. pp: 131-141.
52
Yonar, S.M., 2013. Toxic effects of malathion in carp, Cyprinus carpio carpio: Protective role of lycopene. Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 97, pp: 223-229.
53
Yonar, S.M.; Ural, M.Ş.; Silici, S. and Yonar, M.E., 2014. Malathion-induced changes in the haematological profile, the immune response, and the oxidative/antioxidant status of Cyprinus carpio carpio: Protective role of propolis. Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 102, pp: 202-209.
54
Young, D.S., 2001. Effects of disease on Clinical Lab. Tests, 4th ed AACC.
55
Zhang, Z.; Liu, Q.; Cai, J.; Yang, J.; Shen, Q. and Xu, S., 2017. Chlorpyrifos exposure in common carp (Cyprinus carpio L.) leads to oxidative stress and immune responses. Fish & shellfish immunology. Vol. 67, pp:604-611.
56
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تاثیر سطوح مختلف اسیدآمینه ال-آرژنین بر شاخص های رشد و مقاومت بچه ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) در مواجهه با تنش شوری
آرژنین یکی از اسیدهای آمینه ای است که تأثیر آن بر بهبود رشد و سیستم ایمنی انسان و بسیاری از حیوانات، همواره مورد توجه محققان بوده است. در تحقیق حاضر تأثیر اسیدآمینه آرژنین بر شاخصهای رشد و مقاومت در مواجهه با تنش شوری در ماهی کپور معمولی مورد بررسی قرارگرفته است. به این منظور ماهیان به چهار تیمار (هر تیمار با سه تکرار) تقسیم شدند و با جیرههای غذایی شامل مقدار آرژنین 0، 1/5، 2 و 2/5 درصد، به مدت 60 روز تغذیه شدند. در طی این مدت ماهیها سه بار زیست سنجی شدند. آنالیز داده ها با استفاده از نرم افزار SPSS نسخه 18 و رسم نمودارها با استفاده از نرم افزارExcel انجام شد. تجزیه و تحلیل داده ها با مقایسه میانگین تیمارها در قالب طرح کاملاً تصادفی به کمک آزمون دانکن صورت گرفت (0/05>P). مطابق نتایج به دست آمده اسیدآمینه آرژنین بر ضریب تبدیل غذایی (FCR)، افزایش وزن بدن (BWG) و درصد افزایش وزن (%BWG) بدن کپور ماهیان، تأثیر معنی داری داشت (0/05>p) به طوری که در تیمارهای آزمایشی افزایش وزن و کاهش ضریب تبدیل غذایی مشاهده گردید (0/05>P)، با این حال شاخصهای فاکتور وضعیت (CF)، شاخص رشد ویژه (SGR) و درصد بازماندگی (%SR)، اختلاف معنی داری را نشان ندادند (0/05<p). نتایج اعمال تنش شوری بر تیمارهای مختلف نشان داد که وجود اسیدآمینه آرژنین در جیره غذایی کپور ماهیان می تواند تأثیر چشمگیری بر مقاومت و بقای آنها داشته باشد به طوری که تیمارهای تغذیه شده با 1/5 و 2 درصد آرژنین در طی 72 ساعت تلفاتی نداشت. بنابراین برطبق نتایج به دست آمده از تحقیق حاضر، استفاده از جیره غذایی حاوی 2 درصد اسید آمینه ال آرژنین جهت دستیابی به افزایش وزن ماهی کپور معمولی پیشنهاد می گردد.
http://www.aejournal.ir/article_105331_7ccfd276c723bd63b656a4ead2311201.pdf
2020-03-20
261
268
10.22034/aej.2020.105331
اسیدآمینه
آرژنین
ماهی کپور معمولی
شاخصهای رشد
نرخ بقاء
استرس شوری
ولی اله
جعفری
v.jafari.sh110@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
اسلام
بحری
bahri777@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
مازندرانی
محمد
mazandaranii@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
عباسعلی
حاجی بگلو
hajbagloo@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، م.؛ زارع شحنه، ا.؛ شیوازاد، م.؛ انصاری پیرسرائی، ز.؛ تبیانیان، م.؛ ادیب مرادی، م. و نوری جلیانی، ک.، 1392. اثرات مکمل ال -آرژنین بر رشد، تولید ماهیچه و ذخیره چربی در جوجه های گوشتی. نشریه پژوهش های علوم دامی ایران. جلد 5، شماره 4، صفحات 281 تا 290.
1
پورعلی فشتمی، ح.ر.؛ بهمنی، م.؛ شکوریان، م.؛ حسنی، س.ح. و یارمحمدی، م.، 1393. مطالعه اثر اسیدآمینه آلانین بر شاخص های رشد، تغذیه و بازماندگی بچه تاس ماهیان ایرانی انگشت قد. نشریه توسعه آبزی پروری. سال 8، شماره 1، صفحات 56 تا 70.
2
جهانیان،ر.، 1389. تاثیر سطوح مختلف آرژنین جیره بر زیرمجموعه های مختلف پروتئین های سرم خون و پاسخ های ایمنی جوجه های گوشتی. چهارمین کنگره علوم دامی ایران، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران. 179 صفحه.
3
رستمخانی، ن.؛ زارع، ص. و ملک زاده ویایه، ر.، 1390. بررسی تاثیر افزودن مکمل اسیدآمینه ای ال- آرژنین در غذا بر شاخص رشد کبدی HSI در ماهی قزل آلای رنگین کمان. همایش ملی تغییر اقلیم و تاثیر آن بر کشاورزی و محیط زیست، ارومیه. 157 صفحه.
4
رستمخانی، ن. و ملک زاده ویایه، ر. 1393. اثر مکمل یاری با آرژینین و اورنتین بر شاخص های رشد در ماهی قزل آلای رنگین کمان. مجله غدد درون ریز و متابولیسم ایران. دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی. دوره 16، شماره 4، صفحات 290 تا 302.
5
Bekan, S.; Dogankaya, L. and Cakirogullari, G.C., 2006. Growth and body composition of European catfish fed diet containing different Percentages of Protein.The Israeli Journal of Aquaculture Bamidgeh. Vol. 57, pp: 137-142.
6
Bogdan, C., 2015. Nitric oxide synthase in innate and adaptive immunity: an update. Trends Immunology. Vol. 36, pp: 161-178.
7
Brown, C.R. and Cameron, J.N., 1991a. The relationship between specific dynamic action ŽSDA. and Protein synthesis rates in the channel catfish. Physiol. Zool. Vol. 64, pp: 298-309.
8
Buentello, J.A. and Gatlin, D.M., 1999. Nitric oxide Production in activated macrophages from channel catfish (Ictalurus Punctatus): influence of dietary arginine and culture media. Aquaculture. Vol. 179, pp: 513-521.
9
Chen, G.; Liu, Y.; Jiang, J.; Jiang, W.; Kuang, S.; Tang, L.; Tang, W.; Zhang, Y.A.; Zhou, X. and Feng, L., 2015. Effect of dietary arginine on the immune response and gene expression in head kidney and spleen following infection of Jian carp with Aeromonas hydrophila. Fish and Shellfish Immunology. 44:195-202.
10
Cheng, Z.; Gatlin, D.M. and Buentello, A., 2012. Dietary supplementation of arginine and/or glutamine influences growth Performance, immune responses and intestinal morphology of hybrid striped bass (Morone chrysops × Morone saxatilis). Aquaculture. Vol. 362, pp:39-43.
11
Cowey, C.B. and Luquet, P., 1983. Physiological basis of Protein requirements of fishes. Critical analysis of allowances. In: Proceedings, IV Int. Symp. Protein Metabolism and Nutrition, Clermont- Ferrand, France. INRA Publ., Les Colloques de l’INRA. Vol. 16, pp: 365-384.
12
Efron, D.T. and Barbu, A., 1998. Modulation of inflammation and immunity by arginine supplements. Curr. OPin. Clin. Nutr. Metab. Care. Vol. 1, pp: 531-538.
13
Evoy, D.M.D.; Lieberman, T.J.; Fashey, J. and Daly, M., 1998. Immunonutrition: The role of arginine. Nutrition. Vol. 14, pp: 611-617.
14
Halver, J.H.E., 1989. Fish Nutrition. Edition; Academic Press, London. 798 p.
15
Hu, K.; Zhang, J.X.; Feng, L.; Jiang, W.D.; Wu, P.; Liu, Y.; Jiang, J. and Zhou, X.Q., 2015. Effect of dietary glutamine on growth Performance, non-specific immunity, expression of cytokine genes, Phosphorylation of target of rapamycin (TOR), and anti-oxidative system in spleen and head kidney of Jian carp (Cyprinus carpio var. Jian). Fish Physiology and Biochemistery. Vol. 41, pp: 635-649.
16
Jahanian, R., 2009. Immunological responses as affected by dietary Protein and arginine concentrations in starting broiler chicks. Poult. Sci. Vol. 88, pp: 1818-1824.
17
Kaushik, S.J.; Fauconneau, B.; Terrier, L. and Gras, J., 2012. Arginine requirement and status assessed by different biochemical indices in rainbow trout (Salmo gairdneri R). Aquaculture. Vol. 70, pp: 75-95.
18
Ketola, H.G., 2011. Requirement for dietary lysine and arginine by fry of rainbow trout, Journal of Animal Science. Vol. 56, pp: 101-107.
19
Kim, K.I.; Kayes, T.B. and Amundsen, C.H., 2009. Protein and arginine requirement of rainbow trout. Fed. Proc. Vol. 42, pp: 2158.-2169.
20
Kim, K.I.; Kayes, T.B. and Amundson, C.H., 1992. Requirements for lysine and arginine by rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 106, pp: 333-344.
21
Kiron, V., 2012. Fish immune system and its nutritional modulation for Preventive health care. Animal Feed Science and Technology. Vol. 173, pp: 111-133.
22
Klein, R.G. and Halver, J.E., 2009. Nutrition of salmonid fishes: arginine and histidine requirement of Chinook salmon. J. Nurr. Vol. 100, pp: 1105-110.
23
Li, M.H. and Robinson, E.H., 2016. Effects of supplemental lysine and methionine in low Protein diets on weight gain and body composition of young channel catfish Ictalurus Punctatus. Aquaculture. Vol. 163, pp: 297-307.
24
Li, P.; Mai, K.; Trushenski, J. and Wu, G., 2009. Newdevelopments in fish amino acid nutrition: towards functional and environmentally oriented aquafeeds. Journal of Amino Acids. Vol. 37, pp: 43-53.
25
Liang, H.; Ren, M.; Habte-Tsion, H.M.; Ge, X.; Xie, J.; Mi, H.; Xi, B.; Miao, L.; Liu, B.; Zhou, Q. and Fang, W., 2016. Dietary arginine affects growth Performance, Plasma amino acid contents and gene expressions of the TOR signaling Pathway in juvenile blunt snout bream, Megalobrama amblycephala. Aquaculture. Vol. 461, pp: 1-8.
26
Lin, H.; Tan, X.; Zhou, C.; Niu, J.; Xia, D.; Huang, Z.; Wang, J. and Wang, Y., 2015. Effect of dietary arginine levels on the growth Performance, feed utilization, non-specific immune response and disease resistance of juvenile golden Pompano Trachinotus ovatus. Aquaculture. Vol. 437, pp: 382-389.
27
Moore, B.J.; Hung. S.S.O. and Medrano, J.F., 2008. Protein requirement of Hatchery Produced Juvenile White Sturge on (Acipenser transmontanus). Aquaculture. Vol. 71, pp: 235-245.
28
Neu, D.; Boscolo, W.; Zaminhan, M.; Almeida, F.; Sary, C. and Furuya, W., 2016. Growth Performance, biochemical responses, and skeletal muscle development of juvenile Nile tilapia, Oreochromis niloticus, Fed with Increasing Levels of Arginine. J. World Aquacult. Soc. Vol. 47, pp: 248-259.
29
Pereira, R.T.; Rosa, P.V. and Gatlin D.M., 2017. Glutamine and arginine in diets for Nile tilapia: Effects on growth, innate immune responses, Plasma amino acid Profiles and Whole- body composition. Aquaculture. Vol. 473, pp: 135-144.
30
Pohlenz, C. and Gatlin, D.M., 2014. Interrelationships between fish nutrition and health. Aquaculture. Vol. 431, pp: 111-117.
31
Pohlenz, C.; Buentello, A.; Bakke, A.M. and Gatlin, D.M., 2012a. Free dietary glutamine improves intestinal morphology and increases enterocyte migration rates, but has limited effects on Plasma amino acid Profile and growth Performance of channel catfish Ictalurus Punctatus. Aquaculture. Vol. 370, pp: 32-39.
32
Pohlenz, C.; Buentello, A.; Criscitiello, M.F.; Mwangi, W.; Smith, R. and Gatlin, D.M., 2012b. Synergies between vaccination and dietary arginine and glutamine supplementation improve the immune response of channel catfish against Edwardsiella ictaluri. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 33, pp: 543-551.
33
Pohlenz, C.; Buentello, A.; Mwangi, W. and Gatlin, D.M., 2012c. Arginine and glutamine supplementation to culture media improves the Performance of various channel catfish immune cells. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 32, pp: 762-768.
34
Ronner, P. and Scarpa, A., 2014. Isolated Perfused Brockmann body as a model for studying pancreatic endocrine secretion. Am. J. Physiol. Vol. 243, pp: 352-359.
35
Shi-Wei, X.; Li-Xia, T.; Yan, J.; Hui-Jun, Y.; Gui-Ying, L. and Yong-Jian, L., 2014. Effect of glycine supplementation on growth Performance, body composition and salinity stress of juvenile Pacific white shrimp, fed low fishmeal diet, Aquaculture. Vol. 418, pp: 159–164.
36
Sung, Y.; Hotchkiss J.H.; Austic, R.E. and Dietert R.R., 1991. L-arginine-dependent Production of a reactive nitrogen intermediate by macrophages of a uricotelic species. J. Leukocyte Biol. Vol. 50, pp: 49-56.
37
Tacon, A.G.J. and Cowey, C.B., 1985. Protein and amino acid requirements. Fish Energetics: New Perspectives. Croom Helm, London, pp: 155-183.
38
Tibaldi, E.; Tulli, F.D. and Lam, I., 2015. Arginine requirement and effect of different dietary arginine and lysine levels for fingerling sea bass. Aquaculture. Vol. 127, pp: 207-218.
39
Trushenski, J.T.; Kasper, C.S. and Kohler, C.C., 2006. Challenges and opportunities in finfish nutrition. North American Journal of Aquaculture. Vol. 68, pp: 122-140.
40
Wu, G.; Bazer, F.W.; Dai, Z.; Li, D. and Wu, Z., 2014. Amino acid nutrition in animals: Protein synthesis and beyond. Annu. Rev. Anim. Biosci. Vol. 2, pp: 387-417.
41
Yue, Y.; Zou, Z.; Zhu, J.; Li, D.; Xiao, W.; Han, J. and Yang, H., 2013. Effects of dietary arginine on growth Performance, feed utilization, haematological Parameters and non-specific immune responses of juvenile Nile tilapia (Oreochromis niloticus L.). Aquaculture Resarch. Vol. 2, pp: 15-27.
42
Zhou, F.; Shao, Q.; Xiao, J.; Peng, X.; Ngandzali, B.; Sun, Zh. and Ng, W., 2011. Effects of dietary arginine and lysine levels on growth performance, nutrient utilization and tissue biochemical profile of black sea bream, Acanthopagrus schlegelii, fingerlings. Aquaculture. Vol. 19, pp: 72-80.
43
Zhou, Q.; Jin, M.; Elmada, Z.C.; Liang, X. and Mai, K., 2015. Growth, immune response and resistance to Aeromonas hydrophila of juvenile yellow catfish, Pelterobagrus fulvidraco, fed diets with different arginine levels. Aquaculture. Vol. 437, pp: 84-91.
44
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی عملکرد رشد، برخی از پارامترهای خونی و ایمنی بچه ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) تغذیهشده با مکمل اسیدی فایر
در این تحقیق، تأثیر مکمل اسیدی فایر بر رشد، شاخصهای خونی و ایمنی بچه ماهیان کپور معمولی (Cyprinus carpio) مورد مطالعه قرار گرفت. طرح آزمایشی کاملاً تصادفی در قالب چهار تیمار هر یک در سه تکرار طراحی گردید. مکمل اسیدی فایر در چهار سطح، 0، 2، 4 و 8 گرم در کیلوگرم به جیره پایه اضافه گردید. تعداد 84 عدد بچه ماهی کپورمعمولی با میانگین وزنی 2/08±18/30 گرم با تراکم 7 عدد در 12 آکواریوم 40 لیتری به مدت 60 روز تغذیه شدند. نتایج نشان داد که بیش ترین وزن نهایی، درصد افزایش وزن بدن، میانگین رشد روزانه، سرعت رشد ویژه و کم ترین میزان ضریب تبدیل غذایی در تیمار 8 گرم در کیلوگرم مکمل اسیدی فایر مشاهده شد (0/05>p). اختلاف معنی داری در میزان ضریب چاقی و نرخ زنده مانی ماهیان بین تیمارها ثبت نگردید (0/05<p). تیمار 8 گرم در کیلوگرم مکمل اسیدی فایر در تعداد گلبول های قرمز، مقادیر هماتوکریت، هموگلوبین و تعداد نوتروفیل اختلاف معنی دار آماری (0/05>p) با بقیه تیمارها داشت. هم چنین همین تیمار بیش ترین تعداد گلبول های سفید و تعداد منوسیت را به خود اختصاص داد (0/05<p). از طرف دیگر، بالاترین مقادیر (IgM) ایمنوگلوبولین M و لیزوزیم در تیمار 2 گرم در کیلوگرم مکمل اسیدی فایر مشاهده گردید که اختلاف معنی داری را نشان ندادند (0/05<p). براساس یافته های به دست آمده میتوان اظهار نمود که مکمل اسیدی فایر می تواند باعث ارتقای عملکرد رشد و بهبود برخی از پارامترهای خونی و ایمنی ماهی کپور معمولی گردد.
http://www.aejournal.ir/article_105344_0be5e05af1d887de6dc535f6c4eb8c08.pdf
2020-03-20
269
276
10.22034/aej.2020.105344
ماهی کپور معمولی
مکمل اسیدی فایر
رشد
خون
ایمنی
صمد
اصغرزاده
asgharzadeh_s@yahoo.com
1
گروه شیلات، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران
AUTHOR
رضا
طاعتی
r.taati@gmail.com
2
گروه شیلات، واحد تالش، دانشگاه آزاد اسلامی، تالش، ایران
LEAD_AUTHOR
حدیدی، س. و طاعتی، ر.، 1395. تأثیر سطوح مختلف مکمل اسیدی فایر بایوترونیک بر کارایی تغذیه و برخی از پارامترهای خونی و ایمنی ماهی اسکار تایگر (Astronotus ocellatus). مجله دامپزشکی ایران. دوره 12، شماره 3. صفحات 32 تا 41.
1
صفری، ر.؛ نژادمقدم، ش.؛ حسینی فر، س.ح. و جافرنوده، ع.، 1396. بررسی تأثیر سطوح مختلف نمک پروپیونات سدیم جیره غذایی بر برخی شاخص های خون شناسی و بیوشیمیایی سرم خون ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 3. صفحات 203 تا 210.
2
فلاحتکار، ب.؛ عبدی، ح. و محمودی، ن.، 1391. نقش تغذیه ای نوکلئوتید بر منابع انرژی بدن و عملکرد رشد ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله علمی شیلات ایران. سال 21، شماره 1. صفحات 133 تا 146.
3
مازندرانی، م.؛ سوداگر، م.؛ جعفری، و.ا.؛ جافرنوده، ع.؛ بشی، ف. و سرپناه، ع.ن.، 1397. اثرات اسید پروپیونیک خوراکی بر شاخص های رشد و مقاومت در برابر استرس شوری در کلمه خزری (Rutilus caspicus). مجله آبزیان زینتی. سال 5، شماره 1، صفحات 1 تا 8.
4
Abu Elala, N.M. and Ragaa, N.M., 2015. Eubiotic effect of a dietary acidifier (potassium diformate) on the health status of cultured Oreochromis niloticus. Journal of Advanced Research. Vol. 6, pp: 621-629.
5
Anuta, J.D.; Buentello, A.; Patnaik, S.; Lawrence, A.L.; Mustafa, A.; Hume, M.E.; Gatlin, D.M. and Kemp, M.C., 2011. Effect of dietary supplementation of acidic calcium sulfate (Vitoxal) on growth, survival, immune response and gut microbiota of the Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 42, pp: 834-844.
6
Ballarin, L.; Dall'Oro, M.; Bertotto, D.; Libertini, A.; Francescon, A. and Barbaro, A., 2004. Haematological parameters in Umbrina cirrosa (Teleostei, Sciaenidae): a comparison between diploid and triploid specimens. Comparative Biochemistry and Physiology. Part A: Molecular and Integrative Physiology. Vol. 138, pp: 45-51.
7
Baruah, K.; Sahu, N.P.; Pal, A.K.; Jain, K.K.; Debnath, D. and Mukherjee, S.C., 2007. Dietary microbial phytase and citric acid synergistically enhances nutrient digestibility and growth performance of Labeo rohita (Hamilton) juveniles at sub-optimal protein level. Aquaculture Research. Vol. 38, pp: 109-120.
8
Celik, K.; Ersoy, I.E.; Uzatici, A. and Erturk, M., 2003. The using of organic acids in California turkey chicks and its effects on performance before pasturing. International Journal of Poultry Science. Vol. 2, No. 6 pp: 446 - 448.
9
Cherbut, C.; Aube, A.; Blottiere, H. and Galmiche, J., 1997. Effects of short-chain fatty acids on gastrointestinal motility. Scandinavian Journal of Gastroenterology Supplement. Vol. 222, pp: 58-61.
10
Da Silva, B.C.; Vieira, F.D.N.; Mourino, J.L.P.; Ferreira, G.S. and Seiffert, W.Q., 2013. Salts of organic acids selection by multiple characteristics for marine shrimp nutrition. Aquaculture. Vol. 384-387, pp: 104-110.
11
Defoirdt, T.; Boon, N.; Sorgeloos, P.; Verstraete, W. and Bossier, P., 2009. Short-chain fatty acids and poly-b hydroxyalkanoates: (New) Biocontrol agents for a sustainable animal production. Biotechnology Advances. Vol. 27, pp: 680-685.
12
Devasree, L.D.; Binuramesh, C. and Michael, R.D., 2014. Immunostimulatory effect of water soluble fraction of Nyctanthes arbortristis leaves on the immune response in Oreochromis mossambicus (Peters). Aquaculture Research. Vol. 45, pp: 1581-1590.
13
Ellis, A.E., 1990. Lysozyme assays. In: Techniques in Fish Immunology. Edited by JS Stolen; DP Fletcher; BS Anderson and WB Van Muiswinkel. SOS Publication. USA. pp: 101-103.
14
Heuer, O.E.; Kruse, H.; Grave, K.; Collignon, P.; Karunasagar, I. and Angulo, F.J., 2009. Human health consequences of use of antimicrobial agents in aquaculture. Clinical Infectious Diseases. Vol. 49, pp: 1248-1253.
15
Hossain, M.R.; Pandey, A. and Satoh, S., 2007. Effects of organic acids on growth and phosphorus utilization in red sea bream Pagrus major. Fisheries Science. Vol. 73, pp: 1309-1317.
16
Jalali, M.A.; Ahmadifar, E.; Sudagar, M. and Takami, G.A., 2009. Growth efficiency, body composition, survival and haematological changes in great sturgeon (Huso huso Linnaeus, 1758) juveniles fed diets supplemented with different levels of Ergosan. Aquaculture Research. Vol. 40, pp: 804-809.
17
Khajepour, F. and Hosseini, S., 2012. Citric acid improves growth performance and phosphorus digestibility in beluga (Huso huso) fed diets where soybean meal partly replaced fish meal. Animal Feed Science and Technology. Vol. 171, pp: 68-73.
18
Klinger, D. and Naylor, R., 2012. Searching for solutions in aquaculture: Charting a sustainable course. Annual Review of Environment and Resources. Vol. 37, pp: 247-276.
19
Klontz, G.W., 1994. Fish hematology. In: Techniques in fish immunology. Edited by JS Stolen; TC Fletcher; AF Rowley; TC Kelikoff; SL Kaatari and SA Smith. SOS Publications. Fair Haven, New Jersey, USA. Vol. 3, pp:121-132.
20
Kotzamanis, Y.P; Gisbert, E.; Gatesoupe, F.J.; Zambonino Infante, J. and Cahu, C., 2007. Effects of different dietary levels of fish protein hydrolysates on growth, digestive enzymes, gut microbiota, and resistance to Vibrio anguillarum in European sea bass (Dicentrarchus labrax) larvae. Comparative Biochemistry and Physiology-Part A: Molecular and Integrative Physiology. Vol. 147, pp: 205-214.
21
Lim, C.; Klesius, P.H. and Luckstadt, C., 2010. Effects of dietary levels of potassium diformate on growth, feed utilization and resistance to Streptococcus iniae of Nile tilapia, Oreochromis niloticus. In: Abstract in Proceedings of the 14th International Symposium on Fish Nutrition and Feeding. Qingdao, China. 170 p.
22
Luckstadt, C., 2008. The use of acidifiers in fish nutrition. Perspectives in Agriculture, Veterinary Science, Nutrition and Natural Resources. Vol. 3, No. 44, pp: 1-8.
23
Luo, G.; Xu, J.; Teng, Y.; Ding, C. and Yan, B., 2010. Effects of dietary lipid levels on the growth, digestive enzyme, feed utilization and fatty acid composition of Japanese sea bass (Lateolabrax japonicus) reared in freshwater. Aquaculture Research. Vol. 41, pp: 210-219.
24
Mortazavi Tabrizi, J.; Barzeghar, A.; Farzampour, S.; Mirzaii, H. and Safarmashaei, S., 2012. Study of the effect of prebiotic (Saccharomyces cerevisiae) and acidifier on growth parameters in grower's rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Annals of Biological Research. Vol. 3, No. 5, pp: 2053-2057.
25
Nakai, S.A. and Siebert, K.J., 2003. Validation of bacterial growth inhibition models based on molecular properties of organic acid. International Journal of Food Microbiology. Vol. 86, pp: 249-255.
26
Nermeen, M. and Naela, M., 2014. Eubiotic effect of a dietary acidifier (potassium diformate) on the health status of cultured Oreochromis niloticus. Journal of Advanced Research. Vol. 6, No. 4, pp: 621-629.
27
Ng, W.K.; Koh, C.B.; Sudesh, K. and Siti-Zahrah, A., 2009. Effects of dietary organic acids on growth, nutrient digestibility and gut microflora of red hybrid tilapia, (Oreochromis sp.) and subsequent survival during a challenge test with Streptococcus agalactiae. Aquaculture Research. Vol. 40, pp: 1490-1500.
28
Omosowone, O.O.; Dada, A.A. and Adeparusi, E.O., 2018. Comparison of dietary butyric acid supplementation effect on growth performance and body composition of Clarias gariepinus and Oreochromis niloticus fingerlings. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 17, No. 2, pp: 403-412.
29
Pandey, A. and Satoh, S., 2008. Effects of organic acids on growth and phosphorus utilization in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fisheries science. Vol. 74, pp: 867-874.
30
Reda, R.M.; Mahmoud, R.; Khaled M.; Selim, K.M. and El-Araby, I.E., 2016. Effects of dietary acidifiers on growth, hematology, immune response and disease resistance of Nile tilapia, Oreochromis niloticus. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 50, pp: 255-262.
31
Schütt, D.A.; Lehmann, J.; Goerlich, R. and Hamers, R., 1997. Haematology of swordtail, Xiphophorus helleri. I: Blood parameters and light microscopy of blood cells. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 13, pp: 83-89.
32
Selim, K.M. and Reda, R.M., 2015. Beta-glucans and mannan oligosaccharides enhance growth and immunity in Nile tilapia. North American Journal of Aquaculture. Vol. 77, pp: 22-30.
33
Sherif, A.H. and Gad, M.D., 2013. Studies on the effect of acidifier on cultured Oreochromis niloticus fish. Journal of the Arabian Aquaculture Society. Vol. 8, No. 1, pp: 229-236.
34
Su, X.; Li, X.; Leng, X.; Tan, C.; Liu, B.; Chai, X. and Guo, T., 2014. The improvement of growth, digestive enzyme activity and disease resistance of white shrimp by the dietary citric acid. Aquaculture International. Vol. 22, pp: 1823-1835.
35
Sudagar, M.; Hosseinpoor, Z. and Hosseini, A., 2010. The use of citric acid as attractant in diet of grand sturgeon (Huso huso) fry and its effects on growing factors and survival rate. Aquaculture, Aquarium, Conservation and Legislation International Journal of the Bioflux Society. Vol. 3, pp: 311-316.
36
Vielma, J. and Lall, S., 1997. Dietary formic acid enhances apparent digestibility of minerals in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Aquaculture Nutrition. Vol. 3, pp: 265-268.
37
Yamamoto, T. and Yonemasu, K., 1999. Multiple molecular forms of serum immunoglobulin M in a patient with Waldenstrom’s macroglobulinemia. Clinica Chimica Acta. Vol. 289, pp: 173-176.
38
Zhou, Z.; Liu, Y.; He, S.; Shi, P.; Gao, X.; Yao, B. and Ringø, E., 2009. Effects of dietary potassium diformate (KDF) on growth performance, feed conversion and intestinal bacterial community of hybrid tilapia (Oreochromis niloticus ×O. aureus). Aquaculture. Vol. 291, pp: 89-94.
39
Zhu, Y.; Qiu, X.; Ding, Q.; Duan, M. and Wang, C., 2014. Combined effects of dietary phytase and organic acid on growth and phosphorus utilization of juvenile yellow catfish Pelteobagrus fulvidraco. Aquaculture. Vol. 430. pp: 1-8.
40
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات سطوح مختلف لایزوزیم جیره غذایی بر فاکتورهای رشد، شاخص های خون شناسی و بیوشیمیایی سرمی در ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio)
این مطالعه به منظور بررسی اثر لایزوزیم در مقیاسه ای اضافه شده به جیره در برخی فاکتورهای رشد، شاخص های ایمنی خون شناسی، بیوشیمیایی سرم در ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) می باشد. به این منظور 180 قطعه ماهی با میانگین وزنی 0/1±25/94 گرم در 12 عدد تانک و 4 تیمار با 3 تکرار قرار داده شدند. پس از دوره سازگاری، ماهی ها با جیره های حاوی 0 ، 0/5، 1 و 1/5 گرم بر کیلوگرم لایزوزیم به مدت 8 هفته تغذیه شدند. در انتهای دوره ماهیان زیست سنجی شدند و خونگیری به عمل آمد و شاخص های خونی بررسی شد. نتایج حاصل از این مطالعه نشان داد این محرک ایمنی در میـزان رشد به میزان حدودأ 26/37 گرم تاثیر مثبت داشته و بین تیمارها اختلاف معنی دار مشاهده شد (0/05>p). لایزوزیم جیره بر تعداد گلبول های سفید تیمارها با گروه شاهد تفاوت معنی داری را نشان دادند. بین تیمارهای آزمایشی در تعداد هموگلوبین نیز روند افزایشی مشاهده شد. شمارش افتراقی گلبول های سفید فقط در میزان لنفوسیت افزایش معنی داری بین تیمارهای آزمایشی و شاهد مشاهده شد، در بررسی میزان نوتروفیل بین تیمارها و شاهد اختلاف معنی داری دیده شد. هم چنین در مطالعه شاخص های بیوشیمیایی خون، مشخص شد که در هر سه فاکتور اختلاف معنی داری وجود داشت و روند افزایشی داشتند. با توجه به نتایج مطالعه حاضر به نظر می رسد استفاده از دوزهای 1 و 1/5 گرم بر کیلوگرم لایزوزیم می تواند به بهبود فاکتورهای خونی و بیوشیمیایی سرم و رشد این گونه پرورشی تاثیر مطلوبی داشته باشد.
http://www.aejournal.ir/article_105371_38f570c8799dbc4fa3909e1f16ed16cc.pdf
2020-03-20
277
284
10.22034/aej.2020.105371
کپور معمولی (Cyprinus carpio)
عملکرد رشد
خون شناسی
آنزیم لایزوزیم
شراره
بخت آزاد
sharare.bazaad@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیطزیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
حامد
پاک نژاد
hkolangi@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیطزیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سید حسین
حسینی فر
hossein.hoseinifar@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیطزیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
عبدالمجید
حاجی مرادلو
ahajimoradloo@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیطزیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
عادلی، ا.، 1387. اصول بازاریابی و بسته بندی آبزیان. انتشارات هنر تا بی نهایت. 204 صفحه.
1
عامری مهابادی،م.، 1387. روش های آزمایشگاهی هماتولوژی دامپزشکی. موسسه انتشارات و چاپ دانشگاه تهران .126 صفحه.
2
Ai, Q.; Mai, K.; Tan, B.; Xu, W.; Duan, Q.; Ma, H. and Zhang, L., 2006. Replacement of fish meal by meat and bone meal in diets for large Yellow croaker (Pseudosciaena crocea). Aquaculture. Vol. 260, pp: 255-263.
3
Ashley, P.J., 2007. Fish welfare: current issues in aquaculture. Appl Anim Behav Sci. Vol. 104, pp: 199-235.
4
Balon, E.K., 2006. The oldest domesticated fishes, and the consequences of an epigenetic dichotomy in fish culture. Aqua, Journal of Ichthyology and Aquatic Biology. Vol. 11, No. 2, pp: 47-86.
5
Bekcan, S.; Dogankaya, L. and Cakirogullari, G.C., 2006. Growth and body composition of European catfish (Silurus glanis L.) fed diets containing different percentages of protein. The Israeli Journal of Aquaculture, Bamidgeh. Vol. 58, No. 2, pp: 137-142.
6
Blaxhall,P.C. and Daisley, K.W., 1973. Routine haematological methods for use with fish blood. Fish Biology banner. Vol. 5, No. 6, pp: 771-781.
7
Bondad-Reantaso, M.; Subasinghe, R.P.; Arthur, J.R.; Ogawa, K.; Chinabut, S.; Adlard, R.;Chang, C.S.; Huang, S.L.; Chen, S. and Chen, S.N., 2013. Innate immune responses and efficacy of using mushroom beta glucan mixture (MBG) on orange-spotted grouper, Epinephelus coioides, aquaculture. Fish and shellfish immunology. Vol. 35, pp: 115-125.
8
Castanon, J.I., 2007. History of the use of antibiotic as growth promot- ers in European poultry feeds. Poultry Science. Vol. 86, pp: 2466-2471.
9
Chen, X.; Jiang, S.; Gu, Y. and Shi, Z., 2014. Molecular characterization and expression of cyp19a gene in Carassius auratus. Journal of Fish Biology. Vol. 85, pp: 516-522.
10
Cheng, S.; Ma, L. and Zhang, W., 2009 Effects of lysozyme on growth performance of broiler chickens and apparent digestibility coefficients of nutrients. China Feed. Vol. 19, pp: 32–34. (in Chinese)
11
Deng, J.; Bi, B.; An, Q.; kong, L.; Wang, Q. and Tao, L., 2012. Effect of dietary inclusion of lysozyme on growth performance and plasma biochemical parameters of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss), Aquacult. Nutr. Vol. 18, pp: 332-339.
12
Ding, Y., 2010. Effects of recombinant lysozyme on growth performance and carcass traits in broilers. J. Anhui Agric. Sci. Vol. 38, pp: 15677-15678.
13
FAO. 2009. Press release, 19 June 2009. http://www.fao.org /news/story/en/item/20568/icode/.
14
FAO. 2014. Aquaculture Department, The state of world fisheries and aquaculture. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome. 243 p.
15
Gatlin, D.M. and Li, P., 2004. Dietary supplementation of prebiotics for health management of hybrid stripped bass morone chrysops × M. saxatilis. Aqua Feeds Formul Beyond. Vol. 1, No. 4, pp: 19-21.
16
Gu, W. and Zhang, G., 2008. Effects of lysozyme on growth performance and immune organ index of meat duck. Feed Ind. Vol. 29, pp: 46-48. (in Chinese)
17
Herbert, P.N.; Bausserman, L.L.; Lynch, K.M.; Saritelli, A.L.; Kantor, M.A. and Nicolosi, R.J., 1987. apolipoproteins in the Macaca fascicularis (cynomolgus) monkey. Homologues of the human C and A Biochemistry. Vol. 10, pp: 1457-1463.
18
Hevrøy, E.; Espe, M.; Waagbø, R.; Sandnes, K.; Ruud, M. and Hemre, G.I., 2005. Nutrient utilization in Atlantic salmon (Salmo salar L) fed increased levels of fish protein hydrolysate during a period of fast growth. Aquaculture Nutrition. Vol. 11, pp: 301-313.
19
Komar, C.M., 2005. Peroxisome proliferator-activated receptors (PPARs) and ovarian function–implications for regulating steroidogenesis, differentiation, and tissue remodeling. Reprod Biol Endocrinol. Vol. 3, 41 p.
20
Long, Y.; Lin, S.; Zhu, J.; Pang, X.; Fang, Z. and Lin, Y., 2016. Effects of dietary lysozyme levels on growth performance, intestinal morphology, non-specific immunity and mRNA expression in weanling piglets, Anim. Sci. J. Vol. 87, pp: 411-418.
21
Lu, Y.; Chen, Z. and Pan, H., 2009. Effects of lysozyme on the growth performance and immune response of broiler chickens. Feed Res. Vol. 8, pp: 50-52. (in Chinese)
22
Magnadóttir, B., 2006. Innate immunity of fish (overview), Fish and shellfish immunology. Vol. 20, pp: 137-151.
23
Mahious, A.S.; Van Loo, J. and Lieffrig, F., 2007. Inulin and oligofructose in aquaculture: A review. Aquaculture Europe 2007. October 14-27. pp: 326-327. (Istanbul, Turkey)
24
Morand, M.; Siwicki, A.; Pozet, F.; Klein, P.; Vinaize, J.C. and Keck, N., 1999. Effects of dimerized lysozyme (KLP-602) on the cellular and humoral defence mechanism in sheatfish (Silurus glanis): in vitro.
25
Ramanauskiene, K.; Inkeniene, A.M.; Savickas, A.; Masteikova, R. and Brusokas, V., 2009. Analysis of the antimicrobial activity of propolis and lysozyme in semisolid emulsion systems. Acta Pol. Pharm. Vol. 66, pp: 681-688.
26
Reverter, M.; Bontemps, N.; Lecchini, D.; Banaigs, B. and Sasal, P., 2014. Use of plant extracts in fish aquaculture as an alternative to chemotherapy: Current status and future perspectives. Aquacult. Vol. 433, pp: 50-61.
27
Tacon, A., 1990. Standards methods for the nutrition and feeding of farmed fish and shrimp.
28
Trichet, V.V., 2010. Nutrition and immunity: an update. Aquaculture Research. Vol. 41, No. 3, pp: 356-372.
29
Wang, Y., 2009. Prebiotics: Present and future in food science and technology. Food Research International. Vol. 42, pp: 8-12.
30
Whyte, S.K., 2007. The innate immune response of finfish- a review of current knowledge. Fish and Shellfish Immunol.Vol. 23, pp: 1127-1151.
31
Yeman, M.R. and Yount, N.Y., 2003. Mechanisms of antimicrobial peptide action and resistance. Pharmacol. Rev. Vol. 55, pp: 27-55.
32
Zar, J., 1994. Biostatistical analysis. Prentice-Hall, New York. 622 p.
33
Zhang, X.; Hecker, M.; Park, J.; Tompsett, A.R.; Newsted, J.; Nakayama, K.; Jones, P.D.; Newsted, J.L.; Au, D.W.T.; Kong, R.Y.C.; Wu, R.S.S. and Giesy, J.P., 2008. Real-time PCR array to study effects of chemicals on the hypothalamic-pituitary-gonadal axis of the Japanese medaka. Aquatic Toxicology. Vol. 88, pp: 173-182.
34
Zhang, Y.A.; Salinas, I.; Li, J.; Parra, D.; Bjork, S.; Xu, Z.; LaPatra, S.E.; Bartholomew, J. and Sunyer, J.O., 2010. IgT, a primitive immunoglobulin class specialized in mucosal immunity. Nature Immunology. Vol. 11, pp: 827-835.
35
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تنوع ژنتیکی ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) پرورشی در استان های گیلان ومازندران با استفاده از نشانگرهای ریزماهواره ای
در ایـران تامیـن بچـه ماهـی کپور معمولی از طریق تکثیر مصنوعی صورت میگیردکه می تواند تنوع ژنتیکی این ماهی را دستخوش تغییراتی کند. هدف از این تحقیق، بررسی ساختار ژنتیکی مولدین ماهی کپور معمولی با استفاده از جایگاه های ریزماهواره بود. بدین منظور تعداد 60 نمونه ماهی مولد کپور معمولی از مناطق گیـلان و مازنـدران (30 نمونه از هر منطقـه) جمع آوری شد. DNA نمونه ها به روش فنل-کلروفرم استخراج و با استفاده از 11 جایگاه ژنی ریزماهواره ای بررسی شد. طبق نتایج حاصل محدوده تعداد آلل، متوسط هتروزیگوسیتی مورد انتظار و مشاهده شده به ترتیب 18-11، 0/37 و 0/86 به دست آمد. آنالیز واریانس مولکولی نشان داد که تنوع بالایی (93 درصد) در درون جمعیت های مورد بررسی وجود داردو شاخص های تمایز Fst و Rst تفاوت معنی داری بین مناطق گیلان و مازندران نشان دادند. میزان شاخص Fst 0/013 به دست آمد که نشان دهنده وجود تمایز ژنتیکی پایین بین مناطق گیلان و مازندران بود که علت آن را می توان جابجایی ماهیان مولد توسط پرورش دهندگان عنوان کرد. تمامی جایگاه های مورد بررسی، انحراف معنی داری (0/005>p ) از تعادل هاردی-واینبرگ نشان دادند که علت عمده آن را می توان به افزایش هتروزیگوسیتی نسبت داد. میزان شاخص تمایز و جریان ژنی براساس فراوانی آللی به ترتیب0/0172 و 2/11 محاسبه گردید.همچنین نتایج حاصل از ترسیم دندروگرام بیانگر تمایز ژنتیکی دو جمعیت مورد بررسی است. با توجه به نتایج حاصل، می توان بیان داشت که جمعیت های مورد بررسی از غنای آللی و تنوع ژنتیکی قابل قبولی بر خوردارند.
http://www.aejournal.ir/article_105517_f8b439c10b201f43bed59374cbab31ec.pdf
2020-03-20
285
292
10.22034/aej.2020.105517
ماهی کپور معمولی
گیلان
تنوع ژنتیکی
ریزماهواره
مازندران
تعادل هاردی- واینبرگ
بیژن
اندرز
b_andarz2003@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
ابولقاسم
کمالی
kamali.abolghasem@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
مهران
آوخ کیسمی
dr.keysami@gmail.com
3
گروه شیلات و آبزیان، واحد بهدان، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی گیلان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی ایران، رشت، ایران
LEAD_AUTHOR
هومن
رجبی اسلامی
houmanrajabi@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
سلیمانی، ن. و محمدی، غ.، 1393. بررسی تنوع ژنتیکی ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) در استان خوزستان با استفاده از ریزماهواره. مجله علمی بیوتکنولوژی. دوره 4، شماره 14، صفحات 93 تا 98.
1
عبدلی، ا. ونادری، م.، 1374. تنوع زیستی ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر. انتشارات علمی آبزیان، تهران.
2
قدسی، ز.؛ شعبانی، ع. و شعبانپور، ب.، 1390. بررسی تنوع ژنتیکی ماهی کفال طلایی Risso,1810) Liza aurata) در سواحل استان گلستان با استفاده از نشانگرهای ریزماهواره. تاکسونومی و بیوسیستماتیک. سال 3، شماره 6، صفحات 35 تا 42.
3
قلیچ پورشعبانی، ذ.ع. و شعبانپور، ب.، 1389. مقایسه ساختار ژنتیکی دو جمعیت کپور معمولی (Cyprinus carpio) در مناطق گیلان و مازندران با استفاده از هشت نشانگر ریزماهواره. تاکسونومی و بیوسیستماتیک. سال 2، شماره 5، صفحات 41 تا 50.
4
لالوئی، ف.؛ رضوانی گیل کلائی، س.؛ فاطمی، س.م.ر. و تقوی، م.ج.، 1387. بررسی ژنتیک جمعیت ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) حوضه جنوبی دریای خزر با استفاده از PCR-RFLP) mtDNA). مجله علمی شیلات ایران. دوره 17، شماره 2، صفحات 89 تا 98.
5
Baerwald, M.R. and May, B., 2004. Characterization of microsatellite loci for five members of theminnow family Cyprinidae found in the Sacramento-San Joaquin Delta and its tributaries. Molecular Ecology. Vol. 4, pp: 385-390.
6
Bassam, B.J.; Caetano-Anolles, G. and Gresshoff, G.M., 1991. Fast and sensitive silver staining of DNA in polyacrylamide gels. Annual Biochemistry. Vol. 84, pp: 680-683.
7
Blanchet, S.; Paez, D.; Bernatchez, L. and Dodson, J., 2008. An integrated comparison of captive-bred and wild Atlantic salmon (Salmo salar): Implications for supportive breeding programs. Biological Conservation. Vol. 141, pp: 1989-1999.
8
Chen, L.; Li, Q. and Yang, J., 2008. Microsatellite genetic variation in wild and hatchery populations of the sea cucumber (Apostichopus Japonicus Selenka) from northern China. Aquaculture Research. Vol. 39, pp: 1541-1549.
9
Crooijmans, R.P.M.A.; Bierbooms, V.A.F.; Komen, J.; Van der poal, J.J. and Groenen, M.A.M., 1997. Microsatellite markers in common carp (Cyprinus carpio L.). Animal genetics.Vol. 28.
10
Cui, J.Z.; Shen, X.Y.; Yang, G.P.; Gong, Q.L. and Gu, Q.Q., 2005. Characterizatio of microsatellite DNAs in Takifugurubripes genome and their utilization in thegenetic diversity analysis of T. rubripes andT. pseudommus. Aquaculture. Vol. 250, pp: 129-137.
11
Diz, P.A. and Presa, P., 2009. The genetic diversity pattern of Mytilus alloprovincialis in Galician Rías (NW Iberian estuaries). Aquaculture.Voll. 287, pp: 278-285.
12
Dunham, R.A., 2004. Aquaculture and Fisheries Biotechnology Genetic Approaches. Commonwealth Agricultural Bureax International (CABI) Publishing, Oxfordshire.
13
Excoffier, L.; Laval, G. and Schneider, S., 2005.Arlequin ver. 3.0: An integratedsoftware package for population geneticsdata analysis. Evolutionary BioinformaticsOnline. Vol 1. pp: 47-50.
14
Frankham, R., 2008. Genetic adaptation to captivity in species conservation programs. Molecula Ecology. Vol. 17, pp: 325-333.
15
Grassi, F.; Imazio, S.; Gomarasca, S.; Citterio, S.; Aina, R.; Sgorbati, S.; Sala, F.; Patrignani, G. and Labra, M., 2004. Population structure and genetic variation within Valeriana wallrothii Kreyer in relation to different ecological locations. Plant Science. Vol. 166, pp: 1437-1441.
16
Ha, H.P.; Nguyen, T.T.; Poompuang, S. and Na-Nakorn, U., 2009. Microsatellitesrevealed no genetic differentiation between hatchery and contemporary wild populations of striped catfish, Pangasianodon hypophthalmus (Sauvage1878) in Vietnam. Aquaculture. Vol. 291, pp: 154-160.
17
Hakansson, J. and Jensen, P., 2005. Behavioural and morphological variation between captive populations of red junglefowl (Gallus gallus) possible implications for conservation. Biological Conservation. Vol. 122, pp: 431-439.
18
Hillis, D.M.; Mable, B.K.; Larson, A.; Davis, S.K. and Zimmer, E.A., 1996. Nucleic Acids IV: sequencing and cloning. In: Molecular systematics (eds. Hillis, D.M.; Moritz, C. and Mable, B.K.). Sinauer Associates, Sunderland. pp: 321-384.
19
Kirpichnikov, V.S., 1972. Methods and effectiveness of Rop-sha carp breeding. Communication I. breeding aims, original forms and cross system. Russian Journal of Genetics. Vol. 8, pp: 65-72.
20
Kohlmann, K.; Gross, R.; Murakaeva, A. and Kersten, P., 2003. Genetic variation and structure of common carp populations throughout the distribution range inferred from allozyme, microsatellite and mtDNA marker. Aquatic Living Resources. Vol. 16.
21
Liu, F.; Xia, J.H.; Bai, Z.H.; Fu, J.J.; Li, J.L. and Yue, G.H., 2009. Highgenetic diversitand substantial population differentiation in grass carp (Ctenopharyngodon idella) revealed by microsatellite analysis. Aquaculture. Vol. 297, pp: 51-56.
22
Liu, Y.; Chen, S.; Li, J., and Li, B., 2005. Assessing the Genetic structure of three Japanese flounder (Paralichthys olivaceus) stocks by microsatellite markers. Aquaculture. Vol. 243, pp: 103-111.
23
Machado-Schiaffino, G.; Depico, E. and Garcia Vazquez, E., 2007. Genetic variation losses in Atlantic salmon stocks created for supporitive breeding. Aquaculture. Vol. 264, pp: 59-65.
24
Nei, M., 1978. Estimation of average heterozygosity and genetic distance from small number of individuals. Genetics. Vol. 89, pp: 583-590.
25
Peakall, R. and Smouse, P.E., 2006. GENALEX 6: genetic analysis in Excel. Population genetic software for teaching and research. Molecular Ecology Notes. Vol. 6, pp: 288-295.
26
Rice, W.R., 1989. Analyzing tables of statistical tests. Evolution. Vol. 43, pp: 223-225.
27
Sambrook, J.; Fritsch, E.F. and Maniatis, T., 1989. Electrophoresis of RNA through gels containing formaldehyde. In: Molecular cloning: A laboratory manual. (eds. Ford, N.; Nolan, C. and Fregusen, M.,). Cold Spring Harbor Laboratory Press, New York. pp: 743-745.
28
Thorpe, J.P., 1982. The molecular clock hypothesis: biochemical evolution, genetic differentiation and systematic. Annual Review of Ecology and Systematics. Vol. 13, pp: 139-168.
29
Tiedemann, R.; Hardy, O.; Vekemans, X. and Milinkovitch, M.C., 2000. Higher impact of female than male migration on population structure in large mammals. Molecular Ecology. Vol. 9, pp: 1159-1163.
30
Wright, S., 1978. Evolution and the genetics of populations: variability within and among natural.
31
Yeh, F.C.; Yang, R.C. and Boyle, T., 1999. POPGENE version 1.3.1. Microsoft Window-basesFreeware for population Genetic Analysis. Retrieved from http://www.uallberta.ca/fyeh. On: 11September 2008.
32
Zar, J.H., 1999. Biostatistical analysis, 4th ed. Prentice Hall, Upper Saddle River, New Jwesey.
33
Zhang, Y.P.; Wang, X.X.; Ryder, O.A.; Li, H.P.; Zhang, H.M.; Yong, Y. and Wang, P.Y., 2002. Genetic diversity and conservation in endangered animal species. Pure Applied Chemistry.Vol. 74, pp: 575-584.
34
Zhao, N.; Ai, W.; Shao, Z.l.; Zhu, B.; Brosse, S. and Chang, J., 2005. Microsatellite asassessment of Chinese sturgeon (Acipensersinensis Gray) genetic variability. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 21., pp: 13.
35
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات استفاده مجزا و تلفیقی از نمک پروپیونات سدیم و پروبیوتیک Pediococcus acidilactici بر برخی فاکتورهای رشد و بیان برخی ژنهای مرتبط با رشد در بچه ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio)
مطالعه حاضر اثر پروبیوتیک (Pediococcus acidilactici)، نمک پروپیونات سدیم و ترکیب پروبیوتیک و نمک پروپیونات سدیم بر رشد و میزان بیان ژنهای GH و IGF-I در بچه ماهی کپور معمولی را مورد بررسی قرار داد. بدین منظور 142 قطعه بچه ماهی (با میانگین وزنی تقریبی 14 گرم) به مدت هشت هفته به چهار تیمار صفر، 0/1 درصد پروبیوتیک پدیوکوکوس اسیدلاکتیکی، پروپیونات سدیم یک درصد، ترکیب پدیوکوکوس اسـیدلاکتیکی 0/1 درصد و پروپیونات سدیم یک درصد، طبقه بندی و تغذیه شدند. این آزمایش در قالب یک طرح کاملاً تصادفی انجام گردید. در پایان دوره ماهیان زیست سنجی شده و بین تیمارها اختلاف معنی داری مشاهده شد. به طوری که بالاترین مقدار افزایش وزن بدن (0/47±35/53 گرم) و نرخ رشد ویژه (0/01±3/5) در تیمار سوم مشاهده شد (0/05>p).هم چنین پایین تر مقدار ضریب تبدیل غذایی (0/07±1/05 درصد) در تیمار سوم مشاهده شد (0/05>P).بعد از نمونه برداری از بچه ماهیان مورد تحقیق در شرایط استریل، نتایج نشان داد که میزان بیان ژن GH در تیمار ترکیب پروبیوتیک و نمک پروپیونات سدیم اختلاف معنی داری را با دو تیمار دیگر داشتند (0/05>P). هم چنین بیان ژن IGF-I نیز در تیمار پروبیوتیک و پروپیونات سدیم تنها با تیمار پروبیوتیک اختلاف معنی داری را نشان داد (0/05>P). با توجه به نتایج اثرات مفید P. acidilactici، نمک پروپیونات سدیم و ترکیب پروبیوتیک و نمک پروپیونات سدیم بر میزان بیان ژن های GH و IGF-I در بچه ماهی کپور کاملاً واضح می باشد و به نظر می رسد استفاده از ترکیب پروبیوتیک و نمک پروپیونات سدیم در غذای ماهیان کپور معمولی می تواند در عملکرد رشد و بیان ژن های GH و IGF-I در این گونه تاثیرگذار باشد.
http://www.aejournal.ir/article_105385_15ee31fc385973bcd7b4554f780d16d4.pdf
2020-03-20
293
298
10.22034/aej.2020.105385
پروبیوتیک
رشد
ژنهای GH و IGF1
نمک پروپیونات سدیم
ماهی کپور
الهام
کنعانی
elham_kanaani@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیطزیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
علی
شعبانی
ali_shabany@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیطزیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
رقیه
صفری
fisheriessafari@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیطزیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
جافرنوده، ع.؛امیرتوکمه چی، ا.؛ حسین نجدگرامی، ا.؛ حاجی مرادلو، ع. و نوری، ف. اثرات سینرژیستی اسیدآلی پتاسیم سوربات و پروبیوتیک لاکتوباسیلوس کازئی بر شاخص های رشد، خونی، ترکیب لاشه و فلور میکروبی روده در بچه ماهی قزل آلای رنگین کمان. نشریه توسعه آبزی پروری. دوره 11، شماره 1، صفحات 25 تا 37.
1
Al-Faragi, J.K. and Al-Saphar, S.A., 2013. Effect of local probiotic on common carp growth performance and survival rate. Journal of Genetic and Environmental Resources Conservation. Vol. 1, No. 2, pp: 89-96.
2
Bagheri, T.; Hedayati, S.A.; Yavari, V.; Alizade, M. and Farzanfar, A., 2008. Growth, survival and gut microbial load of rainbow trout fry given diet supplemented with probiotic during the two months of first feeding. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 8, No. 1, pp: 43-48.
3
Balcázar, J.L.; De Blas, I.; Ruiz-Zarzuela, I.; Cunningham, D.; Vendrell, D. and Múzquiz, J.L., 2006. The role of probiotics in aquaculture. Veterinary microbiology. Vol. 114, No. 3-4, pp: 173-186.
4
Biga, P.R.; Peterson, B.C.; Schelling, G.T.; Hardy, R.W.; Cain, K.D.; Overturf, K. and Ott, T.L., 2005. Bovine growth hormone treatment increased IGF-I in circulation and induced the production of a specific immune response in rainbow trout. Aquaculture. Vol. 246, No. 1-4, pp: 437-445.
5
Carnevali, O.; Cardinali, M.; Maradonna, F.; Parisi, M.; Olivotto, I.; Polzonetti‐Magni, A.M. and Funkenstein, B., 2005. Hormonal regulation of hepatic IGF‐I and IGF‐II gene expression in the marine teleost Sparus aurata. Molecular reproduction and development. Vol. 71, pp: 12-18.
6
Castillo, S.; Rosales, M.; Pohlenz, C. and Gatlin, D.M., 2014. Effects of organic acids on growth performance and digestive enzyme activities of juvenile red drum Sciaenops ocellatus. Aquaculture. Vol. 433, pp: 6-12.
7
Cuvin-Aralar, M.L.A.; Luckstaedt, C.; Schroeder, K. and Kühlmann, K.J., 2011. Effect of dietary organic acid salts, potassium diformate and sodium diformate on the growth performance of male Nile tilapia Oreochromis niloticus. Bulletin of Fish Biology. Vol. 13, No. 1-2, pp: 33-40.
8
Dehaghani, P.G.; Baboli, M.J.; Moghadam, A.T.; Ziaei Nejad, S. and Pourfarhadi, M., 2015. Effect of synbiotic dietary supplementation on survival, growth performance, and digestive enzyme activities of common carp fingerlings. Czech J of Animal Science. Vol. 60, No. 5, pp: 224-232.
9
Gislason, G.; Olsen, R.E. and Ringø, E., 1994. Lack of growth‐stimulating effect of lactate on Atlantic Salmon. Aquaculture Research. Vol. 25, No. 8, pp: 861-862.
10
Harada, E.; Kiriyama, H.; Kobayashi, E. and Tsuchita, H., 1988. Postnatal development of biliary and pancreatic exocrine secretion in piglets. Comparative biochemistry and physiology. A, Comparative physiology. Vol. 91, pp: 43-51.
11
He, S.; Zhou, Z.; Liu, Y.; Cao, Y.; Meng, K.; Shi, P. and Ringø, E., 2010. Effects of the antibiotic growth promoters flavomycin and florfenicol on the autochthonous intestinal microbiota of hybrid tilapia. Archives of microbiology. Vol. 192, No. 12, pp: 985-994.
12
Hoseinifar, S.H.; Zoheiri, F. and Caipang, C.M., 2016. Dietary sodium propionate improved performance, mucosal and humoral immune responses in Caspian white fish fry. Fish & shellfish immunology. Vol. 55, pp: 523-528.
13
Hossain, M.A.; Pandey, A. and Satoh, S., 2007. Effects of organic acids on growth and phosphorus utilization in red sea bream. Fisheries Science. Vol. 73, No. 6, pp: 1309-1317.
14
Kim, Y.Y.; Kil, D.Y.; Oh, H.K. and Han, I.K., 2005. material to antibiotics in animal feed. Australasian j of animal sciences. Vol. 18, No. 7, pp: 1048.
15
Koh, C.B.; Romano, N.; Zahrah, A.S. and Ng, W.K., 2016. Effects of a dietary organic acids blend and oxytetracycline on the growth, nutrient utilization and total cultivable gut microbiota of the red hybrid tilapia, Oreochromis sp., and resistance to Streptococcus agalactiae. Aquaculture research. Vol. 47, No. 2, pp: 357-369.
16
Luckstadt, C., 2008. The use of acidifiers in fish nutrition. CAB Reviews: perspectives in agriculture, veterinary science, nutrition and natural resources. Vol. 3, pp: 1-8.
17
Ng, W.K.; Koh, C.B.; Sudesh, K. and Siti‐Zahrah, A., 2009. Effects of dietary organic acids on growth, nutrient digestibility and gut microflora of red hybrid tilapia, Oreochromis sp. and subsequent survival during a challenge test with Streptococcus agalactiae. Aquaculture research. Vol. 40, No. 13, pp: 1490-1500.
18
Pandey, A. and Satoh, S., 2008. Effects of organic acids on growth and phosphorus utilization in rainbow trout. Fisheries Science. Vol. 74, No. 4, pp: 867-874.
19
Resende, J.A.; Silva, V.L.; Fontes, C.O.; Souza-Filho, J.A.; de Oliveira, T.L.R.; Coelho, C.M. and Diniz, C.G., 2012. Multidrug-resistance and toxic metal tolerance of medically important bacteria isolated from an aquaculture system. Microbes and environments. Vol. 27, pp: 449-455.
20
Safari, O. and Sang Atash, M.M., 2013. Study on the effects of probiotic, Pediococcus acidilactici in the diet on some biological indices of Oscar. International Research Journal of Applied and Basic Sciences. Vol. 4, pp: 58-64.
21
Safari, R.; Hoseinifar, S.H. and Kavandi, M., 2016. Modulation of antioxidant defense and immune response in zebra fish using dietary sodium propionate. Fish physiology and biochemistry. Vol. 42, No. 6, pp: 1733-1739.
22
Silva, B.C.; Vieira, F.D.N.; Mouriño, J.L.P.; Bolivar, N. and Seiffert, W.Q., 2016. Butyrate and propionate improve the growth performance of Litopenaeus vannamei. Aquaculture research. Vol. 47, No. 2, pp: 612-623.
23
Suryanarayana, M.V.A.N.; Suresh, J. and Rajasekhar, M.V., 2012. Organic acids in swine feeding: a review. Agric Sci Res J. Vol. 2, pp: 523-533.
24
Taokan, Y.; Maeda, H.; JO, J.Y.; Jeon, M.J.; Bai, S.C.; Lee, W.J. and Koshio, S., 2006. Growth, stress tolerance and non‐specific immune response of Japanese flounder Paralichthys olivaceus to probiotics in a closed recirculating system. Fisheries Science. Vol. 72, No. 2, pp: 310-321.
25
Topping, D.L. and Clifton, P.M., 2001. Short-chain fatty acids and human colonic function: roles of resistant starch and nonstarch polysaccharides. Physiological reviews. Vol. 81, No. 3, pp: 1031-1064.
26
Verschuere, L.; Rombaut, G.; Sorgeloos, P. and Verstraete, W., 2000. Probiotic bacteria as biological control agents in aquaculture. Microbiology and molecular biology reviews. Vol. 64, No. 4, pp: 655-671.
27
Verschuere, L.; Rombaut, G.; Sorgeloos, P. and Verstraete, W., 2000. Probiotic bacteria as biological control agents in aquaculture. Microbiology and molecular biology reviews. Vol. 64, No. 4, pp: 655-671.
28
Yanbo, W. and Zirong, X., 2006. Effect of probiotics for common carp (Cyprinus carpio) based on growth performance and digestive enzyme activities. Animal feed science and technology. Vol. 127, No. 3-4, pp: 283-292.
29
Zhao, L.; Budge, S.M.; Ghaly, A.E.; Brooks, M.S. and Dave, D., 2011. Extraction, purification and characterization of fish pepsin: a critical review. J Food Process Technol. Vol. 2, No. 6, pp: 2-6.
30
Ziaei-Nejad, S.; Rezaei, M.H.; Takami, G.A.; Lovett, D.L.; Mirvaghefi, A.R. and Shakouri, M., 2006. The effect of Bacillus spp. bacteria used as probiotics on digestive enzyme activity, survival and growth in the Indian white shrimp. Aquaculture. Vol. 252, No. 2-4, pp: 516-524.
31
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی اثرات آلودگی های انگلی روی فاکتورهای خونی، ایمنی، استرس و بافت آبشش ماهی فیتوفاگ (Hypophthalmichthys molitrix)
به دلیل تلفات بچه ماهیان فیتوفاگ در طی یک دوره پرورش از اردیبهشت تا اواخر مرداد ماه 1396 از 3 مزرعه (هر یک با 3 استخر): 1) آلوده به انگل، 2) به ظاهرسالم، 3) مبتلا به عوامل ناشناخته تلفات، بچه ماهیان فیتوفاگ مزارع پرورش ماهیان گرمابی شهرستان رشت نمونه برداری صورت گرفت (از هر مزرعه 30 عدد). نمونه ها به صورت زنده به آزمایشگاه منتقل شدند. در آزمایشگاه ابتدا عمل خونگیری به منظور اندازه گیری فاکتورهای خونی، ایمنی و استرس با قطع ساقه دمی انجام گرفت. سپس ماهیان زیست سنجی شده و بررسی های انگل شناسی و بافت شناسی آبشش صورت پذیرفت. از گروه ماهیان آلوده به انگلDiplostomum spathaceum ، Dactylogyrus sp.، Chilodonella sp. و Trichodina sp. و در گروه ماهیان مبتلا به عوامل ناشناخته تلفات فقط Dactylogyrus sp. در زیر میکروسکوپ مشاهده شدند. نتایج نشان داد که سطوح گلبول های سفید، گلبول های قرمز، هموگلوبین سرم، هماتوکریت، لایزوزیم، ایمنوگلوبولین کل در گروه ماهیان مبتلا به سندرم، در گروه ماهیان آلوده به انگل گلوکز، کورتیزول و در گروه ماهیان سالم IgM بیش ترین بود. از لحاظ بافت شناسی آبشش در گروه ماهیان آلوده به انگل و ماهیان مبتلا به عوامل ناشناخته بیش ترین ضایعات دیده شد. ضمن این که به کمک بافت شناسی از آبشش ماهیان آلوده به انگل Dactylogyrus، Trichodina وTrichophyra و در ماهیان مبتلا به سندرم ناشناخته انگل های Dactylogyrus و اسپور تک یاخته ای Dermocystidium دیده شدند. در مجموع نتایج نشان داد که وضعیت سلامتی ماهیان فیتوفاگ تحت تاثیر عوامل انگی قرار می گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_105424_6ca0df43f49d38b7ea9339ac4ac9863f.pdf
2020-03-20
299
314
10.22034/aej.2020.105424
فیتوفاگ (Hypophthalmichthys molitrix)
انگل
خون
آبشش
جاوید
محرمی
1
گروه شیلات، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
AUTHOR
حسین
خارا
h.khara1974@yahoo.com
2
گروه شیلات، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
LEAD_AUTHOR
محدثه
احمدنژاد
m_ahmadnehzad@yahoo.com
3
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
ابراهیمی،م.ح.؛ایمانپور، م.ر. وعدلو،م.ن.، 1390. اثرات دما بر رشد، بازماندگی و بعضی فاکتورهای خونی در ماهی گورامی عظیم الجثه (Osphronemus goramy). مجله زیست شناسی ایران. جلد 24، شماره 5، صفحات 648 تا 654.
1
امیدوار، ص.؛ قاسمی، م.؛ امیدوار، ز.؛ حقیقی کارسیدانی، س. و زلفی نژاد،ک.، 1395. تغییرات شاخص های خونی و ایمنی ماهی سفید دریای خزر (Rutilus frisii kutum) در مواجهه با رابدو ویروس کارپیو. نشریه توسعه آبزی پروری. شماره 4، صفحات 27 تا 38.
2
اورمزدی، ه.، 1378. تک یاخته شناسی پزشکی. انتشارات جهاد دانشگاهی. 329 صفحه.
3
بهمنی، م. و کاظمی، ر.، 1377. مطالعه بافت شناسی روی گناد تاس ماهیان پرورشی جوان. مجله علمی شیلات ایران. شماره 1، صفحات 1 تا 16.
4
پوستی، آ.؛ ادیب مرادی، م. و فضیلی، آ.، 1382. بافت شناسی مقایسه ای و تکنیکهای بافت شناسی. انتشارات دانشگاه تهران. 546 صفحه.
5
جلالی جعفری، ب.، ١٣٧٧. انگل ها و بیماری های انگلی ماهیان آب شیرین. انتشارات معاونت تکثیر و پرورش آبزیان، شیلات ایران. ٥٦٤ صفحه.
6
جمال زادفلاح، ف.؛ خارا،ح.؛ دقیق روحی، ج. وصیادبورانی، م.، 1393. اثر آلودگی های انگلی روی برخی فاکتورهای خونی اردک ماهی (Esox lucius) تالاب انزلی. مجله پژوهش های جانوری (مجله زیست شناسی ایران). شماره 1، صفحات 22 تا 36.
7
حسین پورحموله، م.؛پیغان، ر. ومحمدیان، ب.، 1389. بررسی ضایعات آبششی ناشی از آلودگی انگلی در ماهیان کپور علفخوار (Ctenopharyngodon idella). مجله زیست شناسی دریا (بیولوژی دریا). دوره 2، شماره 1، صفحات 47 تا 55.
8
حلاجیان، ع.؛ کاظمی، ر.؛ محسنی، م.؛ دژندیان، س.؛ یوسفی جوردهی، آ.؛ بهمنی، م.؛ پوردهقانی، م.؛ یزدانی، م.ع. و یگانه، ه.، 1390. تکه برداری به روش جراحی و مطالعه بافت شناسی گناد تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus) پرورشی. مجله تحقیقات دامپزشکی. شماره 3، صفحات 229 تا 233.
9
حیات بخش، م.ر.؛ خارا، ح.؛ صیادبورانی، م.؛ احمدنژاد، م.؛ دقیق روحی، ج.؛ موحد، ر. و رهبر، م.، 1390. بررسی فاکتورهای خونی ماهی سیم دریای خزر (Abramis brama orientalis) (سواحل بندر انزلی). مجله علوم زیستی. شماره 2، صفحات 47 تا 57.
10
خارا، ح.؛ رشیدی کارسالاری، ز.؛ سعیدی، ع.ا.؛ بهروزی، ش.؛ رهبر، م. و احمدنژاد، م.، 1390. بررسی شیوع آلودگی های انگلی ماهی سفید (Rutilus frisii kutum) مهاجر به رودخانه تجن و تاثیر آن ها روی برخی فاکتورهای خونی. زیست شناسی دریا (بیولوژی دریا). شماره 9، صفحات 31 تا 39.
11
رشیدی، ز.، 1386. اثر آلودگی های انگلی روی برخی فاکتورهای خونی ماهی سفید مهاجر به رودخانه تجن. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان. 145 صفحه.
12
رعنای اخوان، س.؛اسلاملو، خ. و جمال زادفلاح، ف.، 1391. اثر استرس های حاد بر تغییرات کورتیزول، آنتی پروتئاز و پارامترهای خونی ماهیان طلائی (Carassius auratus). مجله توسعه آبزی پروری. شماره 2، صفحات 23 تا 35.
13
سارنگ، ا.، 1385. بررسی تغییرات خونی سیاه ماهی (Capoeta capoeta gracilis) آلوده به انگل Clinostomum complanatum در رودخانه شیرود. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان. 115 صفحه.
14
ستاری، م.، 1381. ماهی شناسی (1) تشریح و فیزیولوژی. انتشارات نقش مهر. 659 صفحه.
15
شاهسونی، د.؛ وثوقی، غ.ح. و خضرایی نیا، پ.، 1380. تعیین برخی شاخص های خونی ماهیان خاویاری انگشت قد (قره برون و ازون برون) در استان گیلان. مجله پژوهش و سازندگی. شماره 50، صفحات 14 تا 18.
16
عباسی، ک.؛ مرادخواه، س. و سرپناه، ا.ن.، 1386. شناسایی و توزیع فون ماهیان در رودخانه سیاه درویشان (حوضه تالاب انزلی). مجله پژوهش و سازندگی. شماره 19، صفحات 27 تا 39.
17
فریدپاک، ف.، 1385. تکثیر مصنوعی و پرورش ماهی های گرمابی. انتشارات علمی آبزیان. 298 صفحه.
18
فیضی، ز.؛ جلالی جعفری، ب. و نبی زاده، ف.، 1392. بررسی انگل های مونوژن ماهیان آب شیرین در برخی از استخرهای پرورشی در سطح استان اصفهان. نشریه دامپزشکی (پژوهش و سازندگی). شماره 99، صفحات 2 تا 7.
19
کاظمی، ر.؛ پوردهقانی، م.؛ یوسفی جوردهی، ا.؛ یار محمدی، م. و نصری تجن، م.، 1389. فیزیولوژی دستگاه گردش خون آبزیان و فنون کاربردی خون شناسی ماهیان. انتشارات بازرگان رشت. 194 صفحه.
20
کبریتی،م.؛پیغان،ر. ومحمدیان،ب.، 1389. بررسی تلفات و ضایعات پاتولوژیکی ناشی از حمام نمک 24 ساعته در آبشش ماهیان انگشت قد کپور نقره ای (Hypophthalmichthys molitrix). فصلنامه تالاب. دوره 6، شماره 2، صفحات 49 تا 56.
21
کوهکن، ا.، 1395. آسیب شناسی بافت آبشش ماهی بنی (Barbus sharpeyi) در مواجهه با سطوح مختلف شوری. مجله پاتوبیولوژی مقایسه ای. شماره 1، صفحات 1855 تا 1862.
22
گلچین منشادی، ع.ر.؛ عامری، م. و صادقی لیمنجوب، ر.، 1394. بررسی ضایعات آسیب شناسی بافتی جراحات ایجاد شده در ماهی فیتوفاگ (Hypophthalichthys molitrix) و ماهی آمور (Ctenopharyngodon idella) آلوده به انگل لرنئه آ سیپریناسه آ در برخی از مزارع پرورشی ماهیان گرمابی شهرستان شوشتر. مجله پاتوبیولوژی مقایسه ای ایران. دوره 12، شماره 3، صفحات 1699 تا 1706.
23
گلچین منشادی، ع.ر. و خاج. ح.، 1395. مطالعه تغییرات برخی از فاکتورهای خونی ماهی حمری (Carasobarbus luteus) و مقایسه آن با ماهیان آلوده به مرحله لاروی انگل کنتراسکوم. آسیب شناسی درمانگاهی دامپزشکی. دوره 37، شماره 1، صفحات 29 تا 37.
24
مظاهری کوهانستانی، ز.؛ حاجی مرادلو، ع.م. و قربانی، ر.، 1396. بررسی پارامترهای خونی سیاه ماهیان (Capoeta capoeta gracilis) آلوده به انگل پوستودیپلوستومم کوتیکولا (Posthodiplostomum cuticola) نهر زرین گل استان گلستان. مجله زیست شناسی جانوری تجربی. شماره 1، صفحات 70 تا 93.
25
موحد، ر.؛ خارا، ح.؛ صیادبورانی، م.؛ احمدنژاد، م. و رهبر، م.، 1393. بررسی ارتباط بین آلودگی انگلی و فاکتورهای خونی سوف سفید (Sander lucioperca) صید شده از سواحل بندر انزلی. مجله آبزیان و شیلات. شماره 18، صفحات 65 تا 76.
26
واحدی، ز. و پازوکی، ج.، 1396. ضایعات ناشی از انگل های منوژن بر روی بافت آبشش و سلول های کلراید ماهی سفید دریای خزر. نشریه دامپزشکی (پژوهش و سازندگی). شماره 114، صفحات 162 تا 172.
27
Abdel-Tawwab, M.; Mousa, M.A.A.; Sharaf, S.M. and Ahmad, M.H., 2005. Effect of Crowding Stress on Some Physiological Functions of Nile Tilapia, Oreochromis niloticus (L.) Fed Different Dietary Protein Levels. International Journal of Zoological Research. Vol. 1, No. 1, pp: 41-47.
28
Abreu, J.S.; Sanabria-Ochoa, A.I.; Goncalves, F.D. and Urbinati, E.C., 2008. Stress responses of jovenile Matrinxa (Brycon amazonicus) after transport in a closed system under different loading densities. Ciencia Rural. Vol. 38, No. 5, pp: 1413-1417.
29
Acerete, L.; Balasch, J.C.; Espinosa, E.; Josa, A. and Tort, L., 2004. Physiological responses in Eurasian perch (Perca fluviayilis) Subjected to stress by transport and handling. Aquaculture. Vol. 237, pp: 167-178.
30
Achuthan Nair, G. and Balakrishnan Nair, N., 1983. Effect of infestation with the Isopod, Alitropus Typus M. Edwards (Crustacea; Flabellifera; Aegidae) on the Hematological Parameters of the Host fish Channa sriatus (Bloch). Aquaculture. Vol. 30, pp: 11-19.
31
Affonso, E.G.; Silva, E.C.; Tavares-Dias, M.; Menezes, G.C.; Carvalho, S.M.; Nunes, E.S.S.; Ituassu, D.R.; Roubach, R.; Ono, E.A.; Fim, J.D.I. and Marcon, J.L., 2007. Effect of high level of dietary vitamin C on the blood responses of matrinxa (Brycon amazonicus). Comprative Biochemistry and physiology. Vol. 147, pp: 383-388.
32
Akhundov, M.M. and Fedorov, K., 1995. Effect of exogenous estradiol on ovarian development in juvenile starlet (Acipenser ruthenus). Journal of Ichthyology. Vol. 33, pp: 109-120.
33
Alvarez-Pellitero, P., 2008. Fish immunity and parasite infections: from innate immunity to immunoprophylactic prospects. Veterinary Immunology and Immunopathology. Vol. 126, pp: 171-198.
34
Amar, E.C.; Kiron, V.; Satoh, S.; Okamoto, N. and Watanabe, T., 2000. Effects of dietary b-carotene on the immune response of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fisheries Science. Vol. 66, pp: 1068-1075.
35
Antonio, F.F.; Jorge, V.F.C.; Sofia, G.S.; Sandra, M.M.; Joao, C. and Pedro, M., 2007. Histophathological changes in liver and gills epithelium of Nile tilapia, Oreochromis niloticus, exposed to waterborne copper. Pesquisa Veterinária Brasileira - Brazilian Journal of Veterinary Research. Vol. 27, No. 3, pp: 103-109.
36
Ayoola, S.O., 2008a. Histopathological effects of glyphosate on juvenile African catfish (Clarias gariepinus). Journal of Agriculture and Environmental Sciences. Vol. 4, No. 3, pp: 362-367.
37
Ayoola, S.O., 2008b. Toxicity of glyphosate herbicides on Nile tilapia (Oreochromis niloticus) juvenile. African Journal of Agricultural Research. Vol. 3, No. 2, pp: 825-834.
38
Bani, A. and Haghi-Vayghan, A., 2011. Temporal variations in haematological and biochemical indices of the Caspian kutum, Rutilus frisii kutum. Ichthyological Research. Vol. 58, pp: 126-133.
39
Barber, I.; Hoare, D. and Krause, J., 2000. Effects of parasites on fish behavior: a review and evolutionary perspectives. Reviews in Fish Biology and Fisheries. Vol. 10, pp: 131-165.
40
Bhagwant, S. and Elahee, K.B., 2002. Pathologic gill lesions in two edible lagoon fish species, Mulloidichthys flavolineatus and Mugil cephalus, from the bay of poudre d'or, Mauritius. Western Indian Ocean. Journal of Marine Science. Vol. 1, No. 1, pp: 35-42.
41
Blaxhall, P.C. and Daisley, K.W., 1983. Roution haematological methods for use with fish blood. Fish Biology. Vol. 5, pp: 771-781.
42
Boon, J.H.; Cannaerts, V.H.M.; Augustijn, H.; Machiels, M.A.M.; Decharleroy, D. and Ollevier, F., 1990. The effect of different infection levels with infective Larvae Angullicola crassus. Aquaculture. Vol. 87, pp: 243-253.
43
Bowden, A.J.; Gardiner, N.M.; Couturier, C.S.; Stecyk, J.A.; Nilsson, G.E.; Munday, P.L. and Rummer, J.L., 2014. Alterations in gill structure in tropical reef fishes as a result of elevated temperatures. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 175, pp: 64-71.
44
Bozorgnia, A.; Hosseinifard, M. and Alimohammadi, R., 2011. Acute Effects of Different Temperature in the Blood Parameters of Common Carp (Cyprinus carpio). 2nd International Conference on Environmental Science and Technology IPCBEE. 6, IACSIT Press, Singapore. pp: 52-55.
45
Bykhovsky-Pavloskaya, I.F.; Gussev, A.V.; Dubinia, M.N.; Izyumova, N.A.; Smirnova, T.S.; Sokolovskaya, I.L.; Shulman, S.S. and Epshtein, V.M., 1964. Key to the parasite of Freshwater Fishes of the U.S.S.R Izdatelstrov, Akademii Nauk S.S.S.R Moskva- Leningrad. Program for acientific Translation, Jerusalem. 919 p.
46
Camargo, M.M. and Martinez, C.B., 2007. Histopathology of gills, kidney and liver of a Neotropical fish caged in an urban stream. Neotropical Ichthyology. Vol. 5, pp: 327-336.
47
Chen, G.R.; Sun, L.T.; Lee, Y.H. and Chang, C.F., 1995. Charac-teristics of blood in common carp, Cyprinus carpio, exposed to low temperatures. Journal of Applied Aquaculture. Vol. 5, pp: 21-31.
48
Clauss, T.M.; Dove, A.D.M. and Arnold, J.E., 2008. Hematologic Disorders of Fish. Veterinary Clinic of North America Exotic Animal Practice. Vol. 11, No. 3, pp: 445-462.
49
Ellis, A.E., 1977. The Leucocytes of fish: A review. Journal of Fish Biology. Vol. 11, pp: 453-491.
50
Evans, G.O., 2009. Animal Hematotoxicology. CRC Press. Bocarton. 204 p.
51
Farkas, J.; Christian, P.; Gallego-Urrea, J.A.; Roos, N.; Hassellov, M.; Tollefsen, K.E. and Thomas, K.V., 2011. Uptake and effects of manufactured silver nanoparticles in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) gill cells. Aquatic Toxicology. Vol. 101, pp: 117-125.
52
Feist, G.; Van Enennaam, J.P.; Doroshov, S.I.; Schreck, C.B. and Schneider, R.P., 2004. Early identification of sex in cultured white sturgeon (Acipenser transmontanus) using plasma steroid levels. Aquaculture. Vol. 232, pp: 581-590.
53
Fevolden, S.E.; Røed, K.H. and Fjalestad, K.T., 2002. Selection response of cortisol and lysozyme in rainbow trout and correlation to growth. Aquaculture. Vol. 205, pp: 61-75.
54
Flores-Lopes, F. and Thomaz, A.T., 2011. Histopathologic alterations observed in fish gills as a tool in environmental monitoring. Brazilian Journal of Biology. Vol. 71, No. 1, pp: 179-188.
55
Francesco, F.; Satheeshkumar, P.; Senthil Kumar, D.; Caterina, F. and Giuseppe, P., 2012. A Comparative study of hematological and blood chemistry of Indian and Italian Grey Mullet (Mugil cephalus Linneaus 1758). HOAJ Biology. pp: 1-5.
56
Gaze, W.H. and Wootten, R., 1998. Ectoparasitic species of the genus Trichodina (Ciliophora: Peritrichida) parasitising British freshwater fish. Folia Parasitologica. Vol. 45, No. 3, pp: 177-190.
57
Goldes, S.A.; Ferguson, H.W.; Moccia, R.D. and Daoust, P.Y., 1988. Histological effects of the inert suspended clay kaolin on the gills of juvenile rainbow trout, Salmo gairdneri. Journal of Fish Diseases. Vol. 11, pp: 23-34.
58
Haaparanta, A.; Voltenen, E.T. and Hoffman, R.W., 1997. Gill anomalies of perch and roach from four lakes differing in water quality. Journal of Fish Biology. Vol. 50, pp: 575-591.
59
Hao, L.; Chen, L.; Hao, J. and Zhong, M., 2013. Bioaccumuulation and sub-acute toxicity of zinc nanoparticles in juvenile carp (Cyprinus carpio): A comparative study with its bulk counterparts. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 91, pp: 52-60.
60
Henry, M.A.; Alexis, M.N.; Fountoulaki, E.; Nengas, I. and Rigos, G., 2009. Effects of a natural parasitical infection (Lernanthropus kroyeri) on the immune system of European sea bass, Dicentrarchus labrax L. Parasite Immunology. Vol. 31, No. 12, pp: 729-740.
61
Houston, A.H., 1990. Blood and circulation. In Methods in fish biology. Edited by CB Schreck and PB Moyle. American Fisheries Society. Bethesda, Maryland. 335 p.
62
Karagouni, E.; Athanassopoulou, F.; Tsagozis, P.; Ralli, E.; Moustakareas, T.; Lytra, K. and Dotsika, E., 2005. The impact of a successful anti-myxosporean treatment on the phagocyte functions of juvenile and adult Sparus aurata L. International Journal of Immunopathology and Pharmacology. Vol. 18, No. 1, pp: 121-132.
63
Karlsson-Norrgren, L.; Dickson, W.; Ljungberg, O. and Runn, P., 1986a. Acid water and aluminium exposure: gill lesions and alumunuium accumulation in farmed brown trout, Salmo trutta. Journal of Fish Diseases. Vol. 9, pp: 1-10.
64
Karlsson-Norrgren, L.; Björklund, I.; Ljungberg, O. and Runn, P., 1986b. Acid water and aluminium exposure: experimentally induced gill lesions in brown trout, Salmo trutta. Journal of Fish Diseases. Vol. 9, pp: 11-26.
65
Kavitha, C.; Malarvizhi, S.; Senthil, K. and Ramesh, M., 2010. Toxicological effects of arsenate exposure on hematological, Biochemical and liver transaminases activity in an Indian major carp, Catla catla. Food and Chemical Toxicology. Vol. 48, pp: 2848-2854.
66
Klontz, G.W., 1994. Fish Hematology. In Techniques in Fish Immunology. Edited by JS Stolen, TC Fletcher, AF Rowley, TC Kelikoff, SL Kaattari and SA Smith. SOS Publications. pp: 121-132.
67
Konstantinov, A.S. and Zdanovich, V., 1986. Peculiarities of fish growth in relation to temperature fluctuation. Journal of Ichthyology. Vol. 26, pp: 65-74.
68
Krajnovic-Ozertic, M., 1991. Hematological and Biochemical Characteristics of Reared Sea Bass (Dicentrarchus Labrax L.). Acta biol. Jogos. Ichtyologie. Vol. 23, pp: 25-34.
69
Kubokawa, K.; Watanabe, T.; Yoshioka, M. and Iwata, M., 1999. Effects of acute stress on plasma cortisol, sex steroid hormone and glucose levels in male and female sockeye salmon during the breeding season. Aquaculture. Vol. 172, pp: 335-349.
70
Lermen, C.L.; Lappe, R.; Crestani, M.; Vieira, V.P. and Gioda, C.R., 2004. Effect of different temperature regimes on metabolic and blood parameters of silver catfish Rhamdia quelen. Aquaculture. Vol. 239, pp: 497-504.
71
Li, P.; Lewis, D.H. and Gatlin, D.M., 2004. Dietary oligonucleotides from yeast RNA influence immune responses and resistance of hybrid striped bass (Morone chrysops× Morone saxatilis) to Streptococcus iniae infection. Fish and shellfishimmunology. Vol. 16, No. 5, pp: 561-569.
72
Lom, J. and Dykova, I., 1992. Protozoan Parasites of Fishes. Elsevier Science Publisher Amesterdam. 320 p.
73
Malek, M. and Mobedi, I., 2001. Occurrence of Clinostomum complanatum (Rudolphi, 1819) (Digenea: Clinostomatidae) in (Osteichthys: Cyprinidae) from Shiroud River, Iran. Iranian Journal of Public Health. Vol. 30, pp: 95-98.
74
Martinez, C.B.R.; Nagae, M.Y.; Zaia, C.T.B.V. and Zaia, D.A.M., 2004. Morphological and physiological acute effects of lead in the Neotropical fish Prochilodus lineatus. Brazilian Journal of Biology. Vol. 64, No. 4, pp: 797-807.
75
Molnar, K., 1972. Studies on gill parasiosis of the grass carp (Ctenopharyngodon idella) caused by D. lamellatus Achmerow: HistoPatologycal changes. Acta veterinaria Academiae Scientiarum Hungaricae. Vol. 22, No. 1, pp: 9-24.
76
Neary, E.T.; Develi, N. and Ozgul. G., 2012. Occurrence of Dactylogyrus species (Platyhelminths, Monogenean) on Cyprinids in Almus Dam Lake, Turkey. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 12, pp: 15-20.
77
Nikolsky, G.V., 1963. The Ecology of fishes. Academic Press, London. 350 p.
78
Özdemir, G.; Şanver Çelik, E.; Yılmaz, S.; Gürkan, M. and Kaya, H., 2016. Histopathology and Blood Parameters of Bogue Fish (Boops boops, Linnaeus 1758) Parasitized by Ceratothoa oestroides (Isopoda: Cymothoidae). Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 16, pp: 585-596.
79
Pacheco, M. and Santos, M.A., 2001. Biotransformation, endocrine, and genetic responses of Anguilla anguilla to petroleum distillate products and environmentally contaminated waters. Ecotoxicology Environmental Safty. Vol. 49, pp: 64-75.
80
Panigrahi, A.; Kiron, V.; Puangkaew, J.; Kobayashi, T.; Statoh, S. and Sugita. H., 2005. The Viability of probiotic bacteria as a factor influencing the immune response in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 243, pp: 241-254.
81
Panjvini, F., Abarghuei, S., Khara, H. and Mohammadi Parashkoh, H., 2016. Parasitic infection alters haematology and immunity parameters of common carp, Cyprinus carpio, Linnaeus, 1758. Journal of Parasitic Diseases. Vol. 40, No. 4, pp: 1540–1543.
82
Patriche, T.; Patriche, N.; Bocioc, E. and Coada, M.T., 2011. Serum biochemical parameters of farmed carp (Cyprinus carpio). Aquaculture, Aquarium, Conservation and Legislation – International Journal of the Bioflux Society. Vol. 4, pp: 137-140.
83
Poole, B.C. and Dick, T.A., 1985. Parasite recruitment by stocked walleye, Stizostedion vitreumm (Mitchill), fry in small boreal Lake in central Canada. Journal of Wildlife Diseases. Vol. 21, No. 4, pp: 371-376.
84
Pottinger, T.G. and Carrick, T.R., 2002. Stress responsiveness affects dominant – subordinate relationships in rainbow trout. Hormones and Behavior. Vol. 40, pp: 419-427.
85
Rotllant, J.; Balm, P.H.M.; Perez-Sanchez, J.; Wendelaar-Bonga, S.E. and Tort, L., 2001. Pituitary and interrenal function in gilthead sea bream (Sparus aurata L., Teleostei) after handling and confinement stress. General and Comparative Endocrinology. Vol. 121, pp: 333-342.
86
Saber, T.H., 2011. Histological Adaptation to Thermal Changes in Gills of Common Carp Fishes Cyprinus carpio. Rafidain journal of science. Vol. 22, No. 1, pp: 46-55.
87
Sanders, G.E.; Batts, W.N. and Winton, J.R., 2003. Susceptibility of Zebra fish (Danio rerio) to a Model Pathogen, Spring Viraemia of Carp Virus. Comparative Medicine. Vol. 53, No. 5, pp: 514-521.
88
Saurabh, S. and Sahoo, P.K., 2008. Lysozyme: an important defence molecule of fish innate immune system. Aquaculture Research. Vol. 39, No. 3, pp: 223-239.
89
Schlenk, D. and Benson, W.H., 2001. Target organ toxicity in marine and fresh water teleosts. Taylor and Fransis. pp: 1-90.
90
Siwicki, A.K. and Anderson, D.P., 1993. Nonspecific defence mechanisms assay in fish. II. Potential killing activity of neutrophils and macrophages, lysozyme activity in serum and organs and total immunoglobulin (T-Ig) levels in serum. Fish Diseases Diagnosis and Prevention’s Methods. FAO Project GCP/INT/526/JPN, IFI Olsztyn. pp: 105-112.
91
Stolen, J.S.; Flecther, T.C.; Rowley, A.F.; Zelikoff, J.T.; Kattari, S.L. and Smith, S.A., 1997. Techniques in fish Immunology. 2nd eds. SOS Publication. Fairhaven, USA. 222 p.
92
Takabe, S.; Teranishi, K.; Takaki, S.; Kusakabe, M.; Hirose, S.; Kaneko, T. and Hyodo, S., 2012. Morphological and functional characterization of a novel Na+/K+-ATPase immunoreactive, follicle-like structure on the gill septum of Japanese banded houndshark, Triakis scyllium. Cell and Tissue Research. Vol. 348, pp: 141-153.
93
Tandon, R.S. and Joshi, B.D., 1974. Effect of trypanosome infection on blood glucose levels of some fresh water teleosts. Journal of the Inland Fisheries Society of India. Vol. 6, pp: 81-82.
94
Tavares-Dias, M. and Moraes, F.R., 2007. Leukocyte and thrombocyte reference values for channel catfish (Ictalurus punctatus) with an assessment of morphological, cytochemical, and ultrastructural features. Veterinary Clinical Pathology. Vol. 36, pp: 49-54.
95
Tavares-Dias, M.; Ruas de Moraes, F.; Onaka, E.M. and Bonadio Rezende, P.C., 2007. Changes in blood parameters of hybrid tambacu fish parasitized by Dolops carvalhoi (Crustacea, Branchiura), a fish louse. Veterinarski Arhiv. Vol. 77, pp: 355-363.
96
Temmink, J.; Bowmieister, P.; Jong, P. and Van der Berg, J., 1983. An ultrastructural study of chromate-induced hyperplasia in the gill of rainbow trout, Salmo gairdneri. Aquatic Toxicology. Vol. 4, pp: 165-179.
97
Wang, P.; Lin, C.; Hwang, L.; Huang, C.; Lee, T. and Hwang, P., 2013. Differential responses in gills of euryhaline tilapia, Oreochromis mossambicus, to various hyperosmotic shocks. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 152, pp: 544-551.
98
Wendelaar Bonga, S.E., 1997. The stress response in fish. Physiological Reviews - American Journal of Physiology. Vol. 77, pp: 591-625.
99
Whyte, S.K., 2007. The innate immune response of finfish: A review of current knowledge. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 23, pp: 1127-1151.
100
Yamaguti, S., 1964. Systema helminthum, The Digenetic Trematodes of vertebrate. Part II. Interscience Publisher. New York. 800 p.
101
Zapata, A.G.; Torroba, M. and Varas, A., 1997. Vitaminize E. Immunity in fish larvae. Development Biology Standard. Vol. 90, pp: 23-32.
102
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر استفاده از سطوح مختلف تفاله زیتون بر شاخص های رشد و پارامترهای خونی ماهی طلایی (Carassius auratus)
هدف از مطالعه حاضر بررسی تاثیر استفاده از سطوح مختلف تفاله زیتون در جیره بر شاخص های رشد و پارامترهای خونی ماهی طلایی (Carassius auratus) انجام پذیرفت. 180 عدد ماهی با وزن متوسط اولیه 0/03±13/73 گرم در 15 عدد آکواریوم شیشه ای با حجم آبگیری 100 لیتر (5 تیمار با 3 تکرار) توزیع گردید و به مدت 8 هفته با جیره های حاوی صفر ، 2 ، 4 ، 6 و 8 درصد تفاله زیتون تغذیه شدند. برطبق نتایج، مقادیر شاخص های وزن نهایی، وزن به دست آمده، نرخ رشد ویژه، درصد افزایش وزن بدن، شاخص وضعیت و کارایی پروتئین و چربی در تیمار 2 درصد اختلاف معنی داری را با سایر تیمارها نشان دادند (0/05>P)، ولی در شاخص های طول نهایی و ضریب تبدیل غذایی بین تیمارها اختلافی مشاهده نشد (0/05<P). هم چنین در ارزش تولید چربی تفاوت معنی داری بین تیمارها مشاهده نشد (0/05<P)، اما در ارزش تولید پروتئین اختلاف معنی داری بین تیمارهای 2 درصد و 4 درصد با سایر تیمارها مشاهده شد (0/05>P). اما در پارامترهای هماتولوژیک شامل تعداد گلبول های قرمز، گلبول های سفید، درصد افتراقی گلبول های سفید، هموگلوبین، هماتوکریت و هم چنین شاخص های MCV، MCH و MCHC تفاوت معنی دار آماری بین تیمارهای مختلف مشاهده نشد (0/05<P). براساس نتایج این تحقیق، استفاده از تفاله زیتون تا سطح 2 درصد در جیره ماهی طلایی پیشنهاد می شود.
http://www.aejournal.ir/article_105443_6222f67d25588a83bc1fbf8b340b58aa.pdf
2020-03-20
315
322
10.22034/aej.2020.105443
تفاله زیتون
رشد
شاخص های خونی
ماهی طلایی
آرش
لبریا
king.arash32@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران.
AUTHOR
مجید رضا
خوش خلق
m.khoshkholgh875@gmail.com
2
گروه علوم دریایی، پژوهشکده حوضه آبی دریای خزر، دانشگاه گیلان، رشت، ایران
LEAD_AUTHOR
بهرام
فلاحتکار
falahatkar@guilan.ac.ir
3
گروه علوم دریایی، پژوهشکده حوضه آبی دریای خزر، دانشگاه گیلان، رشت، ایران
AUTHOR
بیلی، آ.ا.، 1379. چربی ها و روغن های خوراکی. چاپ اول، ترجمه مالک، ف.، انتشارات فرهنگ و قلم. 257صفحه.
1
خوش خلق، م.؛ نویریان، ح.ع.؛ موسی پورشاجانی، م.؛ محمدی برسری، م. و عزیزی، م.س.، 1392. تاثیر سطوح مختلف غذایی تفاله زیتون در رشد، ترکیب لاشه و ارزیابی حسی ماهی قزل آلای رنگین کمان پرورشی (Oncorhynchus mykiss). نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. شماره 2، صفحات 133 تا 144.
2
خوش خلق، م.؛ موسی پورشاجانی، م. و محمدی برسری، م.، 1395. بررسی امکان جایگزینی نسبی تفاله زیتون با برخی اقلام جیره در تغذیه ماهی قزل آلای رنگین کمان پرورشی (Oncorhynchus mykiss). نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. شماره 2، صفحات 189 تا 200.
3
رحمتی هولاسو، ه.، 1389. نگرشی بر صنعت پرورش ماهیان زینتی در جهان و ایران. همایش ماهیان زینتی. تهران. 285 صفحه.
4
فلاحتکار، ب.، 1394. تغذیه و جیره نویسی آبزیان. انتشارات دانشگاه جامع علمی و کاربردی، تهران. 334 صفحه.
5
فهیم دانش، م.؛ قوامی، م.؛ حمصی، ا.ه. و آبرومند، پ.، 1387. بررسی میزان ترکیبات فنولی و توکوفرولی در تعدادی از روغن های زیتون تجاری ایرانی با استفاده از کروماتوگرافی مایع با کارایی بالا. فصلنامه علوم و صنایع غذایی. شماره 3، صفحات 53 تا 58.
6
میرنظامی ضیابری، س.ح.، 1377. خواص درمانی زیتون. انتشارات دانش نگار. 137 صفحه.
7
Alishahi, M. and Mesbah, M., 2012. Effects of Viscum album and Nigella sativa extracts on survival rate, growth factors and resistance to Aeromonas hydrophila infection in gold fish (Carassius auratus). Journal of Veterinary Research. Vol. 67, pp: 285-290.
8
Alyakrinskyaya, I.O. and Dolgova, S.N., 1984. Hematological features of young sturgeons. Vopr Ikhtiol. Vol. 4, pp: 135-139.
9
Bransden, M.P.; Carter, C.G. and Nowak, B.F., 2001. Effects of dietary protein source on growth, immune function, blood chemistry and disease resistance of Atlantic salmon (Salmo salar) parr. Animal Science. Vol. 73, pp: 105-113.
10
Chiofalo, B.; Liotta, L.; Chiofalo, V. and Zumbo, A., 2002. La. sansa d’oliva nell’alimentazione degli ovini: effetto sulla composizione acidica del latte (olive cake for ewe feeding: effect on the milk acidic composition). In: Proceedings of the 15th National Congress of S.I.P.A.O.C., Cagliari, Italy. Vol. 64, pp: 136-137.
11
Chilofalo, B.; Liotta, L.; Zumbo, A. and Chiofalo, V., 2004. Administration of olive cake for ewe feeding: effect on milk yield and composition. Small Ruminant Research. Vol. 5, pp: 169-176.
12
Deng, J.; Mai, K.Q.; Zhang, Z.; Wang, X.; Xu, W. and Liufu, Z., 2006. Effects of replacing fish meal with soy protein concentrate on feed intake and growth of juvenile Japanese flounder, Paralichthys olivaceus, Aquaculture. Vol. 258, pp: 503-513.
13
Elboushy, A.R., 1986. Local processing industries offer food and beneficial by products to developing countries. Feed Stuffs Journal. Vol. 58, pp: 36-47.
14
Gomez, S.E.; Ferre, H.; Cassara, H. and Bordone, S., 1997. Cultivo de peces ornamentals (Carassius auratus Cyprinus carpio) en sistemas semiintensivos en la Argentina. Aquatec. Vol. 4, pp: 1-13.
15
Harb, M., 1986. Using the olive pomace for fattening the awassi lambs. Dirasat. Vol. 13, pp: 37-53.
16
Hardy R.W., 2010. Utilization of plant proteins in fish diets: Effects of global demand and supplies of fish meal. Aquaculture Research. Vol. 41, pp: 770-776.
17
Harmantepe, F.B.; Aydin, F. and Doğan, G., 2015. The potential of dry olive cake in a practical diet for juvenile hybrid tilapia, Oreochromis niloticus× Oreochromis aereus. Aquaculture Nutrition. Vol. 10, pp: 1-10.
18
Israilides, C.J.; Vlyssides, A.G.; Mourafeti, V.N. and Karrouni, G., 1997. Olive oil wastewater treatment with the use of an electrolysis system. Bioresource Technology. Vol. 61, pp: 163-170.
19
Jahanbakhshi, A.; Imanpoor, M.; Taghizadeh, V. and Shabani, A., 2013. Hematological and serum biochemical indices changes induced by replacing fish meal with plant protein (sesame oil cake and corn gluten) in the great sturgeon (Huso huso). Comparative Clinical Pathology. Vol. 22, pp: 1087-1092.
20
Jalili, R.; Tukmechi, A.; Agh, N.; Noori, F. and Ghasemi, A., 2013. Replacement of dietary fish meal with plant sources in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss); effect on growth performance, immune responses, blood indices and disease resistance. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 12, pp: 577-591.
21
James, D., 1992. Seafood Technology in the 90s: The Needs of Developing Countries. In: Bligh, E. G., Seafood Science and Technology. Fishing News Books, Blackwell Science, England. pp: 12-23.
22
Klontz, G.W., 1994. Fish Hematology. In: Techniques in Fish Immunology, Stolen, J.S., T.C. Flecher, A.F. Rowely, T.C. Zelikoff, S.L. Kaattari and S.A. Smith (Eds.). SOS Publications, USA. Vol. 2, pp: 121-132.
23
Lupatsch, I.; Kissil, G.W. and Sklan, D., 2003. Comparison of energy and protein efficiency among three fish species gilthead sea bream (Sparus aurata), European sea bass (Dicentrarchus labrax) and white grouper (Epinephelus aeneus): energy expenditure for protein and lipid deposition. Aquaculture. Vol. 225, pp: 175-189.
24
Mangan, J.L., 1988.Nutritional effects of tannins in animal feeds. Nutrition Research Reviews. Vol. 1, pp: 209-231.
25
Martín García, A.I.; Moumen, A.; Yáñez Ruiz, D.R. and Molina Alcaide, E., 2003. Chemical composition and nutrients availability for goats and sheep of two-stage olive cake and olive leaves. Animal Feed Science and Technology. Vol. 107, pp: 61-74.
26
Mioc, B.; Pavic, V.; Vnucec, I.; Prpic, Z.; Kostelic, A. and Susic, V., 2007. Effect of olive cake on daily gain, carcass characteristics and chemical composition of lamb meat. Czech J. Animal Science. Vol. 52, pp: 31-36.
27
Munker, R.; Hillwe, E.; Glass, J. and Paquette, R., 2007. Modern Hematology: Biology and Clinical Management. Humana Press, USA. 498 p.
28
NRC. 1993. Nutrient requirements of fish. National Academies Press. 114 p.
29
Řehulka, J., 2000. Influence of astaxanthin on growth rate, condition, and som blood indices of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture Research. Vol. 190, pp: 27-47.
30
Sansoucy, R., 1985. Olive by-products for animal feed. Food and Agriculture Organization. pp: 1-39.
31
Steffens, W., 1994. Replacing fish meal with poultry by product meal in diets for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 124, pp: 27-34.
32
Theriez, M. and Boule, G., 1970. Nutritive value of olive cake. Ann. Zootech. Vol. 19, pp: 143-157.
33
Tizkar, B.; Kazemi, R.; Alipour, A.; Seidavi, A.; Naseralavi, G. and Ponce-Palafox, J.T., 2015. Effects of dietary supplementation with astaxanthin and β-carotene on the semen quality of goldfish (Carassius auratus). Theriogenology. Vol. 84, pp: 1111-1117.
34
Yansari, A.; Sadeghi, H.; Ansari-Pirsarai, Z. and Zadeh, H., 2007. Ruminal dry matter and nutrient degradability of different olive cake by-products after incubation in the rumen using Nylon bag technique. International Journal of Agriculture and Biology. Vol. 9, pp: 439-442.
35
Yanez Ruiz, D.R.; Moumen, A.; Martin Garcia, A.I. and Molina Alcaide, E., 2004. Ruminal fermentation and degradation patterns, protozoa population, and urinary purine derivatives excretion in goats and wethers fed diets based on two-satge olive cake: Effect on PEG supply. American Society of Animal Science. Vol. 82, pp: 2023-2032.
36
Yildirim, O. and Guroy, D., 2015. Effects of dietary olive pomace meal levels on growth performance, feed utilization and bio-economic analysis of juvenile tilapia (Tilapia zillii). Romanian Biotechnological Letters. Vol. 20, pp: 10982-10987.
37
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر داروی لیورگل بر شاخص های رشد و تکامل گنادی در سطوح مختلف چربی جیره ماهی قرمز (Carassius auratus)
چربی نقش مهمی را به عنوان منبع تامین کننده انرژی و اسیدهای چرب ضروری برای رشد و تکامل ماهیان ایفا می کند. چربی مازاد نیاز جیره می تواند به داخل کبد نفوذ کند و در داخل آن تجمع یابد و باعث ایجاد بیماری کبد چرب گردد. داروی لیورگل از عصاره گیاهی خارمریم تهیه می گردد. خار مریم محتوی فلاوانو لیگنان ها می باشد و دارای اثرات محافظت کننده کبدی است. در این تحقیق اثرات داروی لیورگل بر شاخص های رشد و تکامل گنادی در سطوح مختلف چربی جیره ماهی قرمز مورد بررسی قرار گرفت. برای این آزمایش 9 جیره غذایی مختلف با 3 سطح 0، 0/2 و 0/5 درصد داروی لیورگل و سه سطح 9، 12 و 15 درصد چربی تهیه گردید. در این آزمایش از 540 بچه ماهی قرمز استفاده شد. غذادهی به ماهیان تا رسیدن به فصل تولیدمثل آن ها انجام شد. نمـونه گیـری از گنادها جهت تشخیص جنسیت و تعیین مرحله رسیدگی جنسی هر 45 روز یک بار پس از شروع تغذیه ماهیان از جیره های آزمایش انجام شد. پس از پایان دوره پرورش، شاخص های رشد ماهی (وزن انتهایی، درصد افزایش وزن، افزایش وزن، شاخص وضعیت، نرخ رشد ویژه، بازماندگی و ضریب تبدیل غذایی) مورد بررسی قرار گرفت. نتایج آزمایش نشان داد وزن نهایی، افزایش وزن بدن، درصد افزایش وزن بدن، نرخ رشد ویژه، شاخص وضعیت و ضریب تبدیل غذایی در میان تیمارهای آزمایشی دارای اختلاف معنی دار بود (0/05≥P)، در حالی که بازماندگی در میان تیمارها تفاوت معنی داری را نشان نداد (0/05≤ P). بالاترین شاخص های رشد در تیمار 8 (چربی 15 درصد+داروی لیورگل 0/5 درصد) بود مشاهده شد. در این آزمایش با مقایسه مراحل رسیدگی تخمدان ماهیان تغذیه شده با جیره های مختلف آزمایشی مشخص گردید که تمام مراحل رسیدگی تخمدان در همه تیمارها به جز تیمار 6 یکسان بود ولی در تیمار 6 که حاوی چربی 15 درصد و فاقد داروی لیورگل بود تاخیر در مرحله زرده سازی و رسیدگی مشاهده شد.
http://www.aejournal.ir/article_105458_56e5f6498bf709db04293d1cbf084c47.pdf
2020-03-20
323
330
10.22034/aej.2020.105458
ماهی قرمز
لیورگل
شاخص رشد
چربی
گناد
علی
صادقی
sadeghi.a_shilat@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
سجاد
پورمظفر
sajjad5550@gmail.com
2
ایستگاه تحقیقاتی نرم تنان خلیج فارس، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندر لنگه، ایران
LEAD_AUTHOR
محسن
گذری
gozari2020@gmail.com
3
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، ع. و زارع، پ.، 1394. بررسی اثرات سطوح مختلف چربی جیره غذایی بر برخی شاخص های رشد، ضریب تبدیل غذایی و بازماندگی بچه فیل ماهی پرورشی. مجله منابع طبیعی ایران. شماره 2، صفحات 93 تا 106.
1
بهزادی، ص.، 1385. مطالعه رشد و نمو جنین ماهی سفید. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی. 120 صفحه.
2
فضلی، ح.، 1386. بررسی سن، رشد، تولید مثل و تغذیه ماهی سفید رودخانه ای در رودخانه جنوب انگلستان. موسسه تحقیقات شیلات ایران. صفحات 1 تا 8.
3
محمودی، ز.؛ نویریان، ح. و فلاحتکار، ب.، 1392. تاثیر سطوح مختلف پروتئین و چربی بر عملکرد رشد بچه ماهی سفید دریای خزر (Rutilus frisii kutum). مجله علمی شیلات ایران. جلد 22، شماره 1، صفحات 101 تا 115.
4
نویریان، ح.؛ مصطفی زاده، س. و طلوعی، م.، 1392. بررسی تاثیر سطوح مختلف چربی بر روی معیارهای شاخص رشد بچه ماهی سفید دریای خزر (Rutilus frisii kutum). پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. شماره 68، صفحات 61 تا 68.
5
Abdel, M. and Ahmad, M., 2010. Effect of dietary protein regime during the growing period on growth performance of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture Research. Vol. 40, pp: 1532-1537.
6
Astraomova, A., 2006. Improcing of balanced diets for rearing carp in warm water fishes farming. Aquaculture Nutrition. Vol. 20, pp: 455-463.
7
Boujard, T.; Tineau, A.; Cove, D. and Gasset, H., 2014. Regulation of feed intake, growth, and nutrient and energy utilization in European sea bass (Dicentrarchus labrax) fed high fat diets. Aquaculture. Vol. 231, pp: 529-545.
8
Chai, X.J.; Ji, W.X.; Han, H.; Dai, Y. and Wang, Y. 2013. Growth, feed utilization, body composition and swimming performance of giant croaker, Nibea Japonica temminek and schlegel, fed at different dietary protein and lipid levels. Aquaculture Nutrition. Vol. 19, pp: 928-935.
9
Cho, C.Y. and Kaushik, S., 2010. Effects of protein intake on metabolizable and net energy values of fish diets. Marine Science. Vol. 30, pp: 22-29.
10
Dias, J.; Alvarez, M.; Diez, A. and Arzel, G., 2008. Regulation of hepatic lipogenesis by dietary protein/energy in juvenile European seabass (Dicentrarchus labrax). Aquaculture. Vol. 161, pp: 169-186.
11
Du, Z.; Liu, Y.; Wang, G. and Liang, G., 2005. Effect of dietary lipid level on growth, feed composition and body composition by juvenile Grass carp (Ctenopharyngodon idella). Aquaculture Nutrition. Vol. 11, pp: 139-146.
12
Ebrahimi, R.; Mahmood, T. and Salary, S., 2013. Effect of silymarin on Lead-induced oxidative stress in broilers. Jornal of Poultry Science. Vol. 5, pp: 87-127.
13
Halver, J.E. and Hardy, R., 2011. The effects of dietary retinoic acid on body lipiddepositi on in juvenilered Acipenser persicus, Aquaculture Research. Vol. 193, pp: 271-279.
14
Jamroz, D.; Wiliczkiewicz, A.; Wertelecki, T. and Skorupinska, J., 2005. Use of active substances of plant oriلهرve substances of plant oridin and S1), pp. 1839-1843.
15
Ravaroto, l. 2004. Efficacy of silymarin-phospholipid complex in reducgin in chicken diets based on maize and locally grown cereals. British Poultry Science. Vol. 46, pp: 485-493.
16
Kaushik, S. and Medale, F., 2007. Energy requirements, utilization and dietary supply to salmonide. Aquaculture. Vol. 124, pp: 81-97.
17
Li, X.; Jiang, Y.; Liu, W. and Gec, X., 2012. Protein sparing effect of dietry lipid in practical diets snout bream (Megalobrama amblycephala) fingerlings: effects on digestive and metabolic responses. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 38, pp: 529-541.
18
Lus, M.; Durazo, E. and Viana, M., 2010. Effect of dietary lipid levels on performance, body composition and fatty acid profile of juvenile white Seabass (Atractoscion nobilis). Aquaculture. Vol. 289, pp: 101-105.
19
Mimeault, C.; Woodhouse, A. and Rudeau, V., 2005. The human lipid regulator, gemfibrozil bioconentrates and reduces testosterone in the Common carp (Cyprinus carpio). Aquatic Toxicology, Vol. 73, pp: 44-54.
20
Pei, E.; Lei, W.; Zhu, X. and Yang, Y., 2004. Comparative study on the effect of dietary lipid level on growth and feed utilization for Common carp (Cyprinus carpio). Aquaculture Nutrition. Vol. 10, pp: 209-216.
21
Peyghan, R. and Mahjor, A., 2009. Fish pathology 1rd edition, Shahid Chamran University Press. pp: 882-889.
22
Schuchardt, D.; Vergara, J.M.; Fernandez, H.; Izquierdo, M.S. and Robaina, L., 2008. Effects of different dietary protein and lipid levels on growth, feed utilization and body composition of red porgy (Pagrus pagrus) fingerling. Aquaculture Nutrition. Vol. 14, pp: 1-9.
23
Shalaby, M.; Wahbl, O. and Saoud, M., 2014. Growth, feed utilization and body composition of white sea bream (Diplodus sargus) juveniles of fered diets with various protein and energy levels. Marine Science. Vol. 22, pp: 3-17.
24
Stuart, J. and Hung, S., 2008. Growth of juvenile white sturgeon (Acipenser transmontanus) fed different proteins. Aquaculture. Vol. 76, pp: 303-316.
25
Subhadra, B.; Lochman, R.; Rawlec, S. and chan, R., 2010. Effect of dietary lipid source on the growth, tissus composition and hematological parameters of largemouth bass (Micropterus salmoides). Aquaculture. Vol. 80, pp: 210-222.
26
Thyagarajan, S.; Jayaram, S.; Hari, R. and Sripathi, M., 2002. Herbal medicines for liver diseases in India. Journal of Gastroenterology and Hepatology. Vol. 17, pp: 370-376.
27
Webster, C.D. and Lim, C., 2009. Nutrient Requirement and feeding of finfish for Aquaculture. CAB International Publishing. 418 p.
28
Windisch, W.; Schedle, K.; Plitzner, C. and Kroismayr, A., 2008. Use of phytogenic products as feed additives for swine and poultry. Journal of animal science. Vol. 86, pp: 140-148.
29
Yan, Y.C.; Gong, S.Y.; Luo, Z.; Yang, H.; Zhang, G.B. and Chu, Z.J., 2010. Effects of dietary protein to energy rations on growth and body composition of juvenile chinese sucker, Myxocyprinus asiaticus. Aquaculture Nutrition. Vol. 16, pp: 205-212.
30
Yang, S.D.; Lin, T.S. and Liou, H., 2007. Influence of dietary phosphorous levels on growth, metabolic response and body composition of juvenile carp (Cyprinus carpio). Aquaculture. Vol. 253, pp: 592-601.
31
ORIGINAL_ARTICLE
استفاده از پودرآزولای (Azolla filiculoides) تالاب انزلی به عنوان منبع پروتئین گیاهی در تغذیه ماهی زینتی سیچلاید ایرانی (Iranocichla hormuzensis)
ماهی سیچلاید ایرانی یکی از گونههای منحصر به فرد ماهیان زینتی کشور است که هم چون سایر آبزیان پرورشی، هزینه غذای آن، بخش قابل توجهی از قیمت تمام شده محصول نهایی تولیدی را دربر میگیرد. ازطرف دیگر، تهاجم آزولا به تالاب انزلی، آن را به یک مرداب تبدیل نموده است. با بررسی امکان استفاده ازآزولا در فرمولاسیون غذای ماهی سیچلاید ایرانی میتوان فرصت بهره برداری بهینه از این گیاه را فراهم آورد. در این آزمایش، گیاه آزولا از تالاب انزلی جمع آوری، شسته و خشک گردید و با درصدهای مختلف (15، 30، 45 و 60) جایگزین منابع پروتئین غذای پایه ماهی سیچلاید ایرانی (پودرماهی، سویا، گلوتن ذرت و پودر اسکوئید و سرمیگو) گردید و به مدت 8 هفته روزانه چهار بار تا حد سیری به ماهیان با متوسط وزن بدن 0/3±4/0 گرم داده شد. این غذا با 40 درصد پروتئین از کارخانه سیپی تایلند خریداری شد. جیرهها به گونه ای برای این ماهی گوشت خوار زینتی تنظیم گردیدند که دارای 41 درصد پروتئین با سطوح نیتروژنه یکسان و سطوح انرژی یکسان (4230 کیلوکالری بر 100 گرم غذای خشک) در تمام تیمارها باشد. نتایج نشان داد که از آزولا می توان به عنوان یک مکمل پروتئینی به جای منابع پروتئینی غذای ماهی سیچلاید ایرانی بدون اثرات منفی بر عملکرد رشد، با تاثیر آماری بر بازماندگی استفاده نمود. سطح بهینه 45 درصد بیش ترین تاثیر مثبت بر افزایش وزن و سطوح بالاتر جایگزینی باعث تاثیر منفی بر عملکرد رشد و بازماندگی گردید.
http://www.aejournal.ir/article_104256_feaf1a6802d71b522e315fd94187efb5.pdf
2020-03-20
331
338
10.22034/aej.2020.104256
ماهی زینتی
آزولا
مرداب انزلی
محمود
حافظیه
jhafezieh@yahoo.com
1
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
مسعود
صیدگر
seidgar21007@yahoo.com
2
مرکز تحقیقات آرتمیای کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ارومیه، ایران
AUTHOR
علیرضا
قائدی
3
مرکز تحقیقات اصلاح نژاد ماهیان سردابی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، یاسوج، ایران
AUTHOR
محمد
محمدی
sma.ed8@gmail.com
4
مرکز تحقیقات ماهیان آب شور بافق، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، یزد، ایران
AUTHOR
علی
مهدی آبکنار
aliabkenar@gmail.com
5
گروه شیلات، واحد چابهار، دانشگاه آزاد اسلامی، چابهار، ایران
AUTHOR
سالنامه آماری سازمان شیلات ایران. 1396. معاونت برنامه ریزی و مدیریت منابع دفتر برنامه ریزی و بودجه. 64 صفحه.
1
حافظیه، م. و دادگر، ش.، 1390. گیاهان شگفت انگیز دریایی. مجله آبزیان زینتی. انتشارات موج سبز. صفحات 12 تا 17.
2
Almazan, G.J.; Pullin, R.S.V.; Angels, A.F.; Manolo, T.A. and Agbayani, R.A., 1986. Azolla pinnata as dietary component for Nile tilapia, Oreochromis niloticus. In: Maclean JL, Dizonand LB, Hosillos LV (Eds.), The First Asian Fisheries Forum Proceedings. Asian Fisheries Society, Manila, Philippines. pp: 523-528.
3
Antoine, T.; Carraro, S.; Micha, J.C. and Van Hove, C., 1986. Comparative appetency for Azolla of Cichlasoma and Oreochromis (tilapia). Aquacult. Vol. 53, pp: 95-99.
4
AOAC. 1990. Official Methods of Analysis (15th edn). Association of Official Analytical Chemists: Arlington, VA, USA.
5
Ayyappan, S., 2000. Microbial technology for aquaculture. In: UNESCOMIRCEN Training Manual on, Aquatic microbiology and microbial diseases. 25th April- 1st May, 2000. CIFA, Bhubaneswar, India. pp: 1-16.
6
Balarin, J.D. and Hatton, J.P., 1979. Tilapia: A guide to their biology and culture in Africa. University of Sterling, Scotland, UK. 174 p.
7
Buckingham, K.W.; Ela, S.W.; Morris, J.G. and Goldman, C.R., 1978. Nutritive value of nitrogen-fixing aquatic fern Azolla filiculoides. J Agric Food Chem. Vol 26, pp: 1230-1234.
8
Cohen, M.F.; Meziane, T.; Tsuchiya, M. and Yamasaki, H., 2002. Feeding deterrence of Azolla in relation to deoxyanthocyanin and fatty acid composition. Aquatic Botany. Vol. 74, No. 2, pp: 181-187.
9
Costa, M.L.; Santos, M.C.R.; Carrapico, F. and Pereirac, A.L., 2009. Azolla-Anabaena’s behavior in urban wastewater and artificial Media-Influence of combined nitrogen. Water Res. Vol. 43, pp: 3743-3750.
10
Dabrowski, K. and Glogowski, J., 1977. Studies on the role of exogenous proteolytic enzymes in digestion processes in fish. Hydrobiologia. Vol. 54, pp: 129-134.
11
Das, M.; Rahim, F.I. and Hossain, M.A., 2018. Evaluation of fresh Azolla pinnata as a low-cost supplemental feed for Thai Silver Barb Barbonymus gonionotus. Fishes. Vol. 3, pp: 1-11.
12
Datta, S.N., 2011. Culture of Azolla and its efficacy in diet of Labeo rohita. Aquaculture. Vol. 310, pp: 376-379.
13
Delnavaz, H.B. and Ataei, A.A., 2009. Alien and exotic Azolla in northern Iran. African J Biotechnol. Vol. 8, pp: 187-190.
14
De Silva, S.S.; Gunasekera, R.M. and Atapattu, D., 1989. The dietary protein requirements of young tilapia and an evaluation of the least cost dietary protein levels. Aquaculture. Vol. 80, pp: 271-284.
15
Du, Z.Y.; Liu, Y.J.; Tian, J.T.; Wang, Y. and Liang, G.Y., 2005. Effect of dietary lipid level on growth, feed utilization and body composition by juvenile grass carp (Ctenopharyngodon idella). Aquacult Nutr. Vol. 11, pp: 139-146.
16
Esmaeili, H.R.; Mehrabian, H.R. and Masoudi, M., 2013. Distribution of Iranian cichlid, Iranocichla hormuzensis Coad, 1982 (Actinopterygii: Cichlidae) and its relation to altitude and co-exist species in Iran. The First Iranian Conference of Ichthyology, Isfahan University of Technology, 15-16 May 2013.
17
FAO. 2006. The State of the World Fisheries and Aquaculture. FAO: Rome, Italy. 134 p.
18
FAO. 2016. The State of World Fisheries and Aquaculture, (2016). Contributing to food security and nutrition for all. Rome. 200 p.
19
Folch, J.; Lees, M. and Sloane-Stanley, G.H.S., 1957. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues. Journal of Chemistry. Vol. 226, pp: 497-509.
20
Hartley, H., 1959. Smallest composite designs for quadratic response surface. Biometrics. Vol. 15, pp: 611-624.
21
Hassan, M.S. and Edwards, P., 1992. Evaluation of Duckweed (Lemna perpusilla and Spirodela polyrrhiza) as feed for Nile Tilapia (Oreochromis niloticus). Aquacult. Vol. 104, pp: 315-326.
22
Hasan, M.R. and Chakrabarti, R., 2009. Use of algae and aquatic macrophytes as feed in small-scale aquaculture: A review. FAO Fisheries and Aquaculture technical paper, 531. FAO, Rome, Italy.
23
Haylor, J.S.; Beveridge, M.C.M. and Jauncey, K., 1988. Phosphorus nutrition of juvenile Oreochromis niloticus. ICLARM Conference Proceedings. Vol. 15, pp: 341-345.
24
Hickling, C.F., 1971. Fish Culture. (2nd edn). Faber and Faber Publ London, UK. pp: 155-186.
25
http://www.kaowarsom.be/documents/Bulletins_Mededelingen/2001-2.pdf
26
Joseph, A.; Sherief, P.M. and James, T., 1994. Effect of different dietary inclusion levels of Azolla pinnata on the growth, food conversion and muscle composition of Etroplus suratensis (Bloch). J Aquacul Tropics. Vol. 9, pp: 87-94.
27
Kumari, R.; Ojha, M.L.; Saini, V.P. and Sharma, S.K., 2017. Effect of Azolla supplementation on growth of rohu (Labeo rohita) fingerlings. J Entomol Zool, Stud. Vol. 5, pp: 1116-1119.
28
Leonard, V.; Breyne, C.; Micha, J.C. and Larondelle, Y., 1998. Digestibility and transit time of Azolla filiculoides Lamarck in Oreochromis aureus (Steindachner). Aqua Res. Vol. 29, pp: 159-165.
29
Lupatsch, I.; Kissil, G.W.; Sklan, D. and Preffer, E., 2001. Effects of varying dietary protein and energy supply on growth, body composition and protein utilization in gilthead seabream (Sparus aurata L.). Aquac Nutr. Vol.7, pp: 71-80.
30
Maity, J. and Patra, B.C., 2008. Effect of replacement of fishmeal by Azolla leaf mael on growth, food utilization, pancreatic protease activity and RNA/DNA ratio in the fingerlings of Labeo rohita (Ham.). Can J Pure Appl Sci. Vol. 2, pp: 323-333.
31
Majhi, S.K.; Das, A. and Mandal, B.K., 2006. Growth performance and production of organically cultured grass carp Ctenopharyngodon idella (Val.) under mid-hill conditions of Meghalaya; North Eastern India. Turk J Fish Aquat Sci. Vol. 6, pp: 105-108.
32
Mazid, M.A.; Tanaka, Y.; Katayama, T.; Rahman, M.A. and Simpson, K.L., 1979. Growth response of Tilapia zillii fingerlings fed isocaloric diets with variable protein levels. Aquaculture. Vol. 18, pp: 115-122.
33
Micha, J.C.; Antoine, T.; Wery, P. and Van Hove, C., 1988. Growth, ingestion capacity, comparative appetency and biochemical composition of Oreochromis niloticus and Tilapia rendalli fed with Azolla. In R.S.V. Pullin, T. Bhukaswan, K. Tonguthai, & J. L. Maclean (Eds.), Second International Symposium on Tilapia in Aquaculture. ICLARM Conference Proceedings. Bangkok. pp: 347-355.
34
Mithraja, M.J.; Antonisamy, J.M.; Mahesh, M.; Paul, Z.M. and Jeeva, S., 2011. Phytochemical studies on Azolla pinnata R. Br., Marsilea minuta L. and Salvinia molesta Mitch. Asian Pacific J Trop Biomed. pp: S26-S29.
35
Mohanty, S.N. and Dash, S.P., 1995. Evaluation of Azolla caroliniana for inclusion in carp diet. J Aqua Trop. Vol. 10, pp: 343-353.
36
Mosha, S.S., 2018. A Review on Significance of Azolla Meal as a Protein Plant Source in Finfish Culture. J Aquac Res Development. Vol. 9, 544 p.
37
Olenin, S.; Minchin, D. and Daunys, D., 2007. Assessment of bio-pollution in aquatic ecosystems. Mar Pollut Bull. Vol. 55, pp: 379-394.
38
Panigrahi, S.; Choudhary, D.; Sahoo, J.K.; Das, S.S. and Rath, R.K., 2014. Effect of dietary supplementation of Azolla on growth and survibility of Labeo rohita fingerlings. Asian J Animal Sci. Vol. 9, pp: 33-37.
39
Radhakrishnan, S.; Saravana, B.P.; Seenivasan, C.; Shanthi, R. and Muralisankar, T., 2014. Replacement of fishmeal with Spirulina platensis, Chlorella vulgaris and Azolla pinnata on non-enzymatic and enzymatic antioxidant activities of Macrobrachium rosenbergii. The J Basic Appl Zool. Vol. 67, pp: 25-33.
40
Saini, V.P. and Mathur, S., 2003. Supplementation of duckweed (Lemna minor) in the experimental diet of Labeo rohita (Ham.). Geobios. Vol. 30, pp: 213-216.
41
Santiago, C.B.; Aldaba, M.B.; Reyes, O.S. and Laron, M.A., 1988. Response of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) fry to diets containing Azolla meal. In: The Second International Symposium for Tilapia in Aquaculture, R.S.V. Pullin, T. Bhukaswan, K. Tonguthai and J.L. Maclean, (eds.) ICLARM Conference Proceedings, Manila, Philippines. pp: 377-382.
42
Shireman, J.V.; Rottman, R.W. and Aldridge, F.J., 1983. Consumption and growth of hybrid grass carp fed four vegetation diets and trout chow in circular tanks. J Fish Biol. Vol. 22, pp: 685-693.
43
Sithara, K. and Kamalaveni, K., 2008. Formulation of low cost feed using Azolla as a protein supplement and its influence on feed utilization in fishes. Current Biota. Vol. 2, pp: 212-219.
44
Spataru, P., 1978. Food and feeding habits of Tilapia zillii (Gervais) (Cichlidae) in Lake Kenneret. Aquacult. Vol. 14, pp: 327-338.
45
Sudaaryano, A., 2006. Use of Azolla (c meal as a substitute for defatted soybean meal in diets of juvenile black tiger shrimp (Penaeus monodon). J Coast Dev. Vol. 9, pp: 145-154.
46
Teshima, S.; Gabriel, M.; Gonzalez, O. and Kanazawa, A., 1978. Nutritional requirements of Tilapia: Utilization of dietary protein by Tilapia zillii. Mem. Fac Fish Kagoshima Univ. Vol. 27, pp: 49-57.
47
Tuladhar, B., 2003. Comparative study of fish yields with plant protein sources and fish meal. Our Nature. Vol. 1, pp: 26-29.
48
Umalatha, H.; Gangadhar, B.; Hegde, G. and Sridhar, N., 2018. Digestibility of three feed ingredients by Catla catla (Hamilton, 1822). Oceanogr Fish Open Access J. Vol. 5, pp: 555-672.
49
Vander Zanden, M.J. and Olden, J.D., 2008. A management framework for preventing the secondary spread of aquatic invasive species. Can J Fish Aquat Sci. Vol. 65, pp:1512-1522.
50
Youssouf, A., 2012. Water quality and sediment features in ponds with Nile tilapia (Oreochromis niloticus L.) fed Azolla. J Fish Aquacult. Vol. 3, pp: 47-51.
51
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی امکان پرورش میگوی پا سفید غربی (Litopenaeus vannamei) در محیط غنی از مواد آلی (Biofloc) به منظور تعدیل مشکلات زیست محیطی در استان بوشهر
به منظور شکوفایی صنعت پرورش میگو و سازگار نمودن آن با محیط زیست و هم چنین حفظ منابع آب، طرح پرورش میگوی پاسفید غربی به کمک روش تولید بیوفلاک درون استخر، از اسفند ماه 1390 الی اردیبهشت ماه 1391 اجرا گردید. پرورش در استخری با مساحت 40 مترمربع حاوی آب خروجی مزارع پرورش میگو، انجام شد. بهبود کیفیت آب به کمک هوادهی و افزایش منابع مختلف کربنی از جمله استفاده از نشاسته، شکر و نان خشک انجام گردید. در طول دوره هیچ تعویض آبی، به جز افزایش آب شیرین جهت تنظیم شوری آب، انجام نشد. میزان آمونیاک و نیتریت آب در طول دوره هیچگاه از 0/2 و 0/02 میلی گرم بر لیتر تجاوز ننمود. عملیات پرورش پس از 72 روز و به علت نقص فنی در هوادهی و بروز تلفات، به اجبار متوقف گردید. در طول این دوره، میزان ضریب تبدیل غذایی 1/4 و میانگین وزنی 13/36 محاسبه گردید. نتایج نشان داد که علی رغم وجود برخی مشکلات فیزیکی از جمله فقدان برق اضطراری، پالایش آب در طی دوره پرورش بدون بروز هرگونه مشکل مدیریتی امکان پذیر است. از آن جا که میزان تولید در این روش بیش از روش سنتی بوده و این مزیت، رقابت اقتصادی صنعت پرورش میگو را در سطح جهانی تضمین می نماید و هم چنین با توجه به امکان بازیافت فاضلاب های حاصل از پرورش میگو و از بین بردن اثرات مخرب زیست محیطی آن ها بر محیط، هر گونه تلاش به منظور تبدیل ساختار سنتی تکثیر و پرورش میگو به ساختار صنعتی، ضروری به نظر می رسد.
http://www.aejournal.ir/article_105548_3a65ed1da420f2426a34506735f17c7c.pdf
2020-03-20
339
344
10.22034/aej.2020.105548
بیوفلاک
پرورش میگو
میگوی پاسفید غربی
نشاسته
بوشهر
محسن
نوری نژاد
m.noorinezhad@gmail.com
1
پژوهشکده میگوی کشور، موسسۀ تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
سهیلا
امیدی
smomidi@gmail.com
2
پژوهشکده میگوی کشور، موسسۀ تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران
AUTHOR
امیدی، س.، 1378. بررسی کیفیت آب های ورودی و خروجی استخرهای پرورشی سایت حله بوشهر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 45 صفحه.
1
امیدی، س.، 1380. بررسی اثرات آبزی پروری بر محیط زیست در منطقه حله بوشهر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 55 صفحه.
2
امیدی، س.، 1381. بررسی اثرات آبزی پروری بر محیط زیست در مناطقحله و دلوار بوشهر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 60 صفحه.
3
امیدی، س.، 1382. بررسی اثرات آبزی پروری بر محیط زیست در مناطق حله و مند بوشهر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 90 صفحه.
4
امیدی، س.، 1383. بررسی اثرات آبزی پروری بر محیط زیست در مناطق حله و دلوار بوشهر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 80 صفحه.
5
امیدی، س.، 1385. بررسی اثرات آبزی پروری بر محیط زیست در مناطق حله، دلوار و شیف بوشهر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 90 صفحه.
6
امیدی، س.، 1386.بررسی اثرات آبزی پروری بر محیط زیست در مناطق حله و مند بوشهر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 80 صفحه.
7
ایزدپناهی، غ.، 1385. بررسی هیدرولوژی و هیدروبیولوژی خلیج فارس آب های استان بوشهر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 186 صفحه.
8
ایزدپناهی، غ.، 1391. بررسی مستمر هیدرولوژی و هیدروبیولوژی خلیج فارس آب های استان بوشهر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 210 صفحه.
9
آیین جمشید، خ.، 1391. بررسی اثرات کشند قرمز بر مزارع پرورشی استان بوشهر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور.
10
زنده بودی ع.ع.، 1391. بررسی امکان پرورش متراکم میگوی پا سفید غربی در روش بدون تعویض آب. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور.
11
فاطمی، م.، 1382. ترجمه گزارش وضعیت محیط زیست خلیج فارس. تهران، سازمان حفاظت محیط زیست.
12
مطلبی، ع.؛ محسنی زاده، ف.؛ دهقان، س.؛ موسوی، ع. و سراجی، ف.، 1390. پایش کشند قرمز در آب های خلیج فارس و دریای عمان. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 234 صفحه.
13
نوری نژاد، م. و امیدی، س.، 1388. افزایش میزان آمونیاک و فسفات در آب های ساحلی استان بوشهر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 25 صفحه.
14
نوری نژاد، م.، 1395. پایش عوامل کیفیت آب در طرح تولید میگوی عاری از بیماری خاص. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور.
15
Avnimelech, Y., 1999. Carbon/nitrogen ratio as a control element in aquaculture systems. Aquaculture. Vol. 176, pp: 227-235.
16
Avnimelech, Y., 2006. Bio-filters: the need for a new comprehensive approach. Aquac. Eng. Vol. 34, No. 3, pp: 172-178.
17
Avnimelech, Y., 2012. Biofloctechnology-A Practical Guide Book, 2nd edition. TheWorld Aquaculture Society, Baton Rouge, Louisiana, United States.
18
Browdy, C.L.; Bratvold, D.; Stokes, A.D. and McIntosh, R.P., 2001. Perspectives on the application of closed shrimp culture systems. Aquaculture. pp: 20-34.
19
Crab, R.; Avnimelechc, Y.; Tom Defoirdt, T.; Bossierb, P. and Verstraetea, W., 2007. Nitrogen removal techniques in aquaculture for a sustainable production. Aquaculture. Vol. 270, pp: 1-14.
20
Fujii, N.; Kaneda, A.; Magome, Sh. and Takeoka, H., 2001. Establishing a Conceptual Design for Jelly fish Bloomsin the Seto Inland Sea.Interdisciplinary Studies on Environmental Chemistry Marine Environmental Modeling & Analysis. pp: 65-71.
21
Hargreaves, J.A., 2006. Photosynthetic suspended-growth systems in aquaculture. Aquaculture Engineering. Vol. 34, pp: 344-363.
22
Imai, I.; Yamaguchi, M. and Hori, Y., 2006. Eutrophication and occurrence of harmful alga blooms in the Seto Inland Sea, Japan. Plankton and benthose Reseearch. The plankton Society of Japan and The Japoniese Association of Benthology. Vol. 1, No. 2, pp: 71-84.
23
Limsuwan, Ch., 2009.Experiences cultivating white shrimp in Thailand. Bulletins Nicovita.
24
Mcabee, B.J.; Browdy, C.L.; Rhodes, R.J. and Stokes, A.D., 2003. The use of greenhouse enclosed raceway systems for the super-intensive production of pacific white shrimp Litopenaeus vannamei in the United States. Global Aquaculture Advocate. Vol. 6, pp: 40-43.
25
Nybakken, J.W. and Bertness, M.D., 2004. Biology: An Ecological Approach, Benjamin Cummings Publishing Company, 6th ed. 592 p.
26
Hach Company. 2002. DR/4000 Spectrophotometer procedure manual. USA: Hach Company.
27
Reid, B. and Arnold, C.R., 2000. The intensive culture of the penaeid shrimp penaeus vannamei boone in a recirculating raceway system. The University of Texas at Austin Marine Science Institute, Texas 78373 USA.
28
ROPME. 2010. Manual of Oceanographic Observation and Pollutant Analysis Methods (MOOPAM), second Publication Kuwait.
29
Rosenberry, B., 2001. New shrimp farming technology: Zero-exchange, environmentally friendly, superintensive. World shrimp farming. Vol. 14, pp: 5-10.
30
Sale, P.F.; Feary, D.A.; Burt J.A.; Bauman, A.G.; Cavalcante, G.H.; Drouillard, K.G.; Kjerfve, B.; Marquis, E., Trick, Ch.G., Usseglio, P. and Van Lavieren, H., 2010. The Growing Need for Sustainable Ecological Management of Marine Communities of the Persian Gulf. Springer. AMBIO. DOI 10.1007/s13280-010-0092-6.
31
Samocha, T., 2009. Pacific white shrimp production in a super-intensive raceway system. ysi inc. aquaculture. 3 p.
32
Van Wyk, P.; Hodgikins, M.D.; Laramore, R.L.; Main, K.; Mountain, J. andScarpa, J., 1999. Farming marine shrimp in recirculating freshwater system. Harbor branch oceanographic institution, Florida department of agriculture and consumer services. pp: 141- 161.
33
Wyban, J.A. and Sweeney, J.N., 1991. Intensive shrimp production technology. High Health Aquaculture Inc., Hawaii. 158 p.
34
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه خواص آنتی اکسیدانی کیتوالیگوساکاریدهای استخراجی از ضایعات میگوی پرورشی پا سفید غربی (Litopenaeus vannami)، اسکوئید هندی (Uroteuthis duvaucelii) و خرچنگ گرد (Portunus pelagicus)
استفاده بهینه از ضایعات حاصل از کارخانه های فرآوری آبزیان از مسائل بسیار مهم و نیاز به بازبینی اساسی دارد، از یک سو، ورود این ضایعات به عنوان زباله های تر علاوه بر تولید شیرابه و تهدید اکوسیستم های آبی و بروز مشکلات زیست محیطی، می تواند یکی از عوامل مشکل زا و سبب بروز بیماری های مختلف گردد. از سویی دیگر منابعی چنین با اهمیت می تواند مورد بهره برداری قرار گرفته و منتج به تولید فراورده های با ارزش افزوده بالا مثل آنزیم ها، ژلاتین، کیتین، کیتوزان و غیره گردد. با توجه به اثرات بیولوژیک و زیست فعال گزارش شده از الیگوساکاریدهای استخراجی از ترکیبات کیتینی نرم تنان دریایی در سال های اخیر که با نام (کیتوالیگوساکاریدها) شناخته می شوند، امکان استفاده از این اجزای فراسودمند به عنوان ترکیبات آنتی اکسیدان مورد بررسی قرار گرفت. در بررسی های انجام شده تقریباً در تمام آزمون ها کیتوالیگوساکاریدها توانایی مهاری نسبتاً خوبی از خود نشان دادند که می توانند به عنوان یک منبع خوب برای تحقیقات آنتی اکسیدانی مورد بررسی قرار بگیرند. در آزمون خنثی سازی رادیکال DPPH، با کمی فاصله از ویتامین C الیگوساکارید اسکوئید هندی با استخراج اسیدی با 78/23 درصد، در آزمون بررسی احیا در برابر یون آهن، کیتوالیگوساکارید خرچنگ گرد با استخراج آنزیمی بیش ترین اثر فعالیت احیایی 19 درصد را از خود نشان داد. هم چنین در آزمون سنجش ظرفیت آنتی اکسیدانی کل کیتوالیگوساکارید میگو وانامی استخراج اسیدی بالاترین ظرفیت آنتی اکسیدانی 42/19 درصد را از خود نشان داد.
http://www.aejournal.ir/article_105574_45f84d5f646031ca09cece4796c801a3.pdf
2020-03-20
345
352
10.22034/aej.2020.105574
کیتوالیگوساکارید
وزن مولکولی
خواص آنتی اکسیدانی
زیست فعال
هومن
تیموری
teimouri.training@gmail.com
1
گروه عمل آوری فرآورده های شیلاتی، دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
LEAD_AUTHOR
مسعود
رضائی
2
گروه عمل آوری فرآورده های شیلاتی، دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
AUTHOR
مهدی
طبرسا
3
گروه عمل آوری فرآورده های شیلاتی، دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
AUTHOR
سلیمانی، س.؛ یوسفی زاده، م.؛ معین، س.؛ امراللهی بیوکی، ن.؛ کشاورز، م. و اصلیان، ح.، 1394. ارزیابی فعالیت آنتی اکسیدانی و تعیین محتوای پلی فنلی توتیای دریایی Echinometra mathaei خلیج فارس. زیست فناوری دانشگاه تربیت مدرس. دوره 6، شماره 2، صفحات 71 تا 82.
1
Agnihotri, S.A.; Mallikarjuna, N.N. and Aminabhavi, T.M., 2004. Recent advances on chitosan-based micro- and nanoparticles in drug delivery. Journal of Controlled Release. Vol. 100, No. 1, pp: 5-28.
2
Azuma, K.; Izumi, R.; Osaki, T.; Ifuku, S.; Morimoto, M.; Saimoto, H. and Minami, S., 2015. Chitin, chitosan, and its derivatives for wound healing: old and new materials. Journal of functional biomaterials. Vol. 6, No. 1, pp: 104-142.
3
Baha, E.A.; Assaâd, S.; Anissa, H.; Ali,B. and Mohamed, A.A., 2017. β-chitin and chitosan from squid gladius: Biological activities of chitosan and its application as clarifying agent for apple juice. International Journal of Biological Macromolecules. Vol. 104, pp: 953-962.
4
Bersuder, P.; Hole, M. and Smith, G., 1998. Antioxidants from a Heated Histidine-Glucose Model System. I: Investigation of the Antioxidant Role of Histidine and Isolation of Antioxidants by High-Performance Liquid Chromatography. Journal of the American Oil Chemists’ Society. Vol. 75, pp: 181-187.
5
Bravo-Osuna, I.; Millotti, G.; Vauthier, C. and Ponchel, G., 2007. In vitro evaluation of calcium binding capacity of chitosan and thiolated chitosan poly (isobutyl cyanoacrylate) core shell nanoparticles. International Journal of Pharmaceutics. Vol. 338, No. 12, pp: 284-290.
6
Feng, T.; Du, Y.; Li, J.; Wei, Y. and Yao, P., 2006. Antioxidant activity of half N-acetylated water-soluble chitosan in vitro. European Food Research and Technology. Vol. 225, No. 1, pp: 133-138.
7
Ferreira, I.; Baptista, P.; Vilas-Boas, M. and Barros, L., 2007. Free-radical scavenging antioxidant properties of a sulfated polysaccharide from the brown marine algae Sargassum swartzii. CJNM. Vol. 10, pp: 421-428.
8
Fu, L.; Xu, B.T.; Xu, X.R.; Gan, R.Y.; Zhang, Y. and Xia, E.Q., 2011. Antioxidant capacities and total phenolic contents of 62 fruits. Food Chem. Vol. 129, pp: 345-350.
9
Huang, H.C.; Hong, L.; Chang, P.; Zhang, J.; Lu, S.Y.; Zheng, B.W. and Jiang, Z.F., 2014. Chitooligosaccharides Attenuate Cu2+-Induced Cellular Oxidative Damage and Cell Apoptosis Involving Nrf2 Activation. Neurotoxicity Research. Vol. 27, No. 4, pp: 411-420.
10
Jo, S.H.; Ha, K.S.; Moon, K.S.; Kim, J.G.; Oh, C.G.; Kim, Y.C.; Apostolidis, E. and Kwon, Y.I., 2013. Molecular Weight Dependent Glucose Lowering Effect of Low Molecular Weight Chitosan Oligosaccharide (GO2KA1) on Postprandial Blood Glucose Level in SD Rats Model. Vol. 14, pp: 14214-14224.
11
Kim, J.Y.; Lee, J.K.; Lee, T.S. and Park, W.H., 2003. Synthesis of chitooligosaccharide derivative with quaternary ammonium group and its antimicrobial activity against Streptococcus mutans. International Journal of Biological Macromolecules. Vol. 32, No. 1-2, pp: 23-27.
12
Kim, S.K. and Rajapakse, N., 2005. Enzymatic production and biological activities of chitosan oligosaccharides(COS): A review. Carbohydrate Polymers. Vol. 62, No. 4, pp: 357-368.
13
Li, K.; Xing, R.; Liu, S. and Li, P., 2016. Advances in preparation, analysis and biological activities of single chitooligosaccharides. Carbohydrate Polymers. Vol. 139, pp: 178-190.
14
Liao, F.H.; Shieh, M.J.; Chang, N.C. and Chien, Y.W., 2007. Chitosan supplementation lowers serum lipids and maintains normal calcium, magnesium, and iron status in hyperlipidemic patients. Nutrition Research. Vol. 27, No. 3, pp: 146-151.
15
Liu, H.T.; Li, W.M.; Xu, G.; Li, X.Y.; Bai, X.F.; Wei, P. and Du, Y.G., 2009. Chitosan oligosaccharides attenuate hydrogen peroxide-induced stress injury in human umbilical vein endothelial cells. Pharmacological Research. Vol. 59, No. 3, pp: 167-175.
16
Ming, T.Y.; Joan, H.Y. and Jeng, L.M., 2008. Antioxidant properties of chitosan from crab shells. Carbohydrate Polymers. Vol. 74, pp: 840-844.
17
Ngo, D.H.; Qian, Z.J.; Vo, T.S.; Ryu, B.; Ngo, D.N. and Kim, S.K., 2011. Antioxidant activity of gallate-chitooligosaccharides in mouse macrophage RAW264.7 cells. Carbohydrate Polymers. Vol. 84, No. 4, pp: 1282-1288.
18
Oh, S.H.; Ryu, B.; Ngo, D.H.; Kim, W.S.; Kim, D.G. and Kim, S.K., 2017. 4-hydroxybenzaldehyde-chitooligomers suppresses H 2 O 2 -induced oxidative damage in microglia BV-2 cells. Carbohydrate Research. Vol. 440, pp: 32-37.
19
Park, J.H.; Saravanakumar, G.S.; Kim, K.Y. and Kwon, C., 2010. Targeted delivery of low molecular drugs using chitosan and its derivatives. Advanced Drug Delivery Reviews. Vol. 62, No. 1, pp: 28-41.
20
Prabu, K. and Natarajan, E., 2012. In Vitro Antimicrobial and Antioxidant Activity of Chitosan Isolated from Podophthalmus vigil. Journal of Applied Pharmaceutical Science. Vol. 2, No. 9, pp: 75-82.
21
Prieto, P.; Pineda, M. and Aguilar, M., 1999. Spectrophotometric quantitation of antioxidant capacity through the formation of a phosphomolybdenum complex: specific application to the determination of vitamin, Analytical biochemistry.
22
Pasiyappazham R.; Namasivayam, S.; Vairamani, S. and Annaian, S., 2014. Extraction, characterization and antioxidant property of chitosan from cuttlebone Sepia kobiensis (Hoyle 1885). International Journal of Biological Macromolecules. Vol. 64, pp: 202-212.
23
Sinswat, P. and Tengamnuay, P., 2003. Enhancing effect of chitosan on nasal absorption of salmon calcitonin in rats: comparison with hydroxypropyl- and dimethyl-b cyclodextrins. International Journal of Pharmaceutics. Vol. 257, No. 12, pp: 15-22.
24
Sugano, M.; Fujikawa, T.; Hiratsuji, Y.; Nakashima, K.; Fukuda, N. and Hasegawa, Y., 1980. A novel use of chitosan as a hypocholesterolemic agent in rats. American Journal of Clinical Nutrition. Vol. 33, pp: 787-793.
25
Sun, T.; Zhou, D.; Xie, J. and Mao, F., 2006. Preparation of chitosan oligomers and their antioxidant activity. European Food Research and Technology. Vol. 225, No. 3-4, pp: 451-456.
26
Suzuki, K.; Mikami, T.; Okawa, Y.; Tokoro, A.; Suzuki, S. and Suzuki, M., 1986. Antitumor effect of hexa-N acetylchitohexaose and chitohexaose. Carbohydrate Research. Vol. 151, pp: 403-408.
27
Thanou, M.; Verhoef, J.C. and Junginger, H.E., 2001. Chitosan and its derivatives as intestinal absorption enhancers. Advanced Drug Delivery Reviews. Vol. 50, No. S1, pp: S91-S101.
28
Tokoro, A.; Tatewaki, N.; Suzuki, K.; Mikami, T.; Suzuki, S. and Suzuki, M., 1988. Growth-inhibitory effect of hexa-N-acetylchitohexaose and chitohexaose against meth-A solid tumor. Chemical & Pharmaceutical Bulletin. Vol. 36, pp: 784-790.
29
Uchida, Y.; Lzume, M. and Ohtakara, A., 1989. Preparation of chitosan oligomers with purified chitosanase and its application. In G. Skjak-Brak, T. Anthonsen, & P. Sandford (Eds.), Chitin and chitosan: Sources, chemistry, biochemistry, physical properties and applications London: Elsevier. pp: 373-382.
30
Van, P.; Cutsem, J. and Cabrera, C., 2005. Preparation of chitooligosaccharides with degree of polymerization higher than 6 by acid or enzymatic degradation of chitosan. Biochemical Engineering Journal. Vol. 25, No. 2, pp: 165-172.
31
Wei, X.L. and Xia, W.S., 2003. Research development of chitooligosaccharides physiological activities. Chinese Pharmaceutical Bulletin. Vol. 19, No. 6, pp: 614-617.
32
Xia, W.S., 2003. Physiological activities of chitosan and its application in functional foods. Journal of Chinese Institute of Food Science and Technology. Vol. 3, No. 1, pp: 77-81.
33
Xie, C.; Wu, X.; Long, C.; Wang, Q.; Fan, Z.; Li, S. and Yin, Y., 2016. Chitosan oligosaccharide affects antioxidant defense capacity and placental amino acids transport of sows. BMC Veterinary Research. Vol. 12, No. 1.
34
Younes, O.; Ghorbel-Bellaaj, R.; Nasri, M.; Chaabouni, M.; Rinaudo, M. and Nasri, S. 2012. Process Biochem. Vol. 47, pp: 2032-2039.
35
Zhao, X.R. and Xia, W.S., 2006. Antimicrobial activities of chitosan and application in food preservation. Chinese Food Research and Development. Vol. 27, No. 2, pp: 157-160.
36
Zhou, K.; Xia, W.; Zhang, C. and Yu, L., 2006. In vitro binding of bile acids and triglycerides by selected chitosan preparations and their physicochemical properties. LWT Food Science and Technology. Vol. 39, pp: 1087-1092.
37
Zong, H.; Li, K.; Liu, S.; Song, L.; Xing, R.; Chen, X. and Li, P., 2017. Improvement in cadmium tolerance of edible rape (Brassica rapa L.) with exogenous application of chitooligosaccharide. Chemosphere. Vol. 181, pp: 92-100.
38
Zou, P.; Li, K.; Liu, S.; He, X.; Zhang, X.; Xing, R. and Li, P., 2016. Effect of sulfated chitooligosaccharides on wheat seedlings (Triticum aestivum L.) under salt stress. J. Agric. Food Chem. Vol. 64, pp: 2815-2821.
39
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی ترکیب صید، فراوانی طولی، CPUE و CPUA در ترال میگو در آب های بوشهر، شمال خلیج فارس
به منظور شناخت ترکیب صید تور ترال مورد استفاده در منطقه آب های بوشهر در مرداد و شهریور 1395 نمونه برداری انجام شد. ترکیب صید تورهای ترال میگو در پایان دوره نمونه برداری شامل گونه های میگوی سفید سرتیز (Metapenaeus affinis)، میگوی ببری سبز (Penaeus semisulcatus)، میگوی کیدی یا خنجری (Parapenaeopsis stylifera)، میگوی ویولن زن (Metapenaeopsis stridulans) و میگوی تراکی (Trachypenaeus granulosus) بود میگوی ببری سبز با 92/74% گونه غالب بود و بعد از آن میگوی سفید سرتیز با 6/7% در رده دوم قرار داشت. هم چنین میزان CPUA برای میگوی ببری 1045/49 کیلوگرم بر متر مربع و برای میگوی سفید سرتیز 57/87 کیلوگرم بر مترمربع به دست آمد. هم چنین میزان CPUE برای میگوی ببری 18/059±17/44 کیلوگرم در ساعت برآورد گردید. میزان زیست توده برای گونه میگوی ببری سبز 3842/924 تن و برای میگوی سفید سرتیز 191/43 تن برآورد گردید. تعداد 3320 ماهی از ایستگاه های مورد مطالعه شامل 25 گونه در این مطالعه صید و مورد بررسی قرار گرفت. از بین این 25 گونه، ماهی چغوک طلایی با 25/2 درصد بیش ترین فراوانی صید و مقوا ماهی با 0/012 درصد کم ترین میزان صید را به خود اختصاص دادند. هم چنین ماهیان چغوک طلایی، گوازیم دم رشته ای، عروس ماهی منقوط، گیش چشم درشت، گیش پهن و گوازیم لکه دار با 100 درصد وقوع در تمامی ایستگاه ها بیش ترین و ماهی گلو(گربه ماهی) کم ترین میزان درصد وقوع را دارا بودند. ماهی سارم با میانگین طولی 59/13 سانتی متر دارای بیش ترین میانگین طولی و پنج زاری ماهی با 9/75 میانگین طولی کم ترین را به خود اختصاص دادند. به طور کلی تراکم میگوی ببری سبز در منطقه شرق استان و هم چنین قسمتی از غرب استان کم ترین مقدار بوده و فراوانی آن در اعماق متوسط و زیاد، بیش تر است. از این رو می توان گفت که پراکنش آن از نوع پراکنش افقی است.
http://www.aejournal.ir/article_105576_27a0080e549e02843c7360d545b30bfd.pdf
2020-03-20
353
360
10.22034/aej.2020.105576
صید به ازای واحد تلاش
صید به ازای واحد سطح
ترکیب صید
تور ترال
بوشهر
شکراله
فرخ بین
farrokhbin@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
احسان
کامرانی
ezas47@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
سعید
گرگین
sgorgin@gau.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
ابوالفضل
ناجی
abolfazlnaji@hormozgan.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
دلیری، م.، 1391. بررسی پراکنش و صید به ازای واحد تلاش میگوی ببری سبز (Penaeus semisulcatus) و تأثیر برخی از عوامل فیزیکوشیمیایی آب دریا بر پراکندگی آن در آب های ساحلی استان بوشهر. پایان نامه کارشناسی ارشد رشته صید و بهره برداری آبزیان. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 57 صفحه.
1
بی همتا، م.ر. و زارع چاهوکی، م.ع.، 1390. اصول آمار در علوم منابع طبیعی. انتشارات دانشگاه تهران. 300 صفحه
2
سپاهی، ع.؛ گرگین، س.؛ سانتوز، خ.؛ عباسپورنادری، ر. و آذینی، م.ر.، 1395. مطالعه ترکیب و تنوع گونه های ماهیان صید شده در تورهای ترال آب های دریای عمان- منطقه چابهار. نشریه پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. دوره 4، شماره 3، صفحات 29 تا 42.
3
مرادی، م.، ۱۳۸۸. تخمین زی توده، اعلام زمان شروع و خاتمه صید میگوی ببری سبز در آب های استان بوشهر. خلیجفارس ۱۳۸۵-۱۳۸۳. گزارش کار پروژه تحقیقاتی. پژوهشکده میگوی کشور. ۵۷ صفحه.
4
Alderstein, S. and Ehrich, S., 2002. Effect of deviations from target speed and of time of day on catch rates of some abundant species under North Sea International Bottom Trawl Survey protocol conditions. ICES Journal of Marine Science. Vol. 59, pp: 594-603.
5
Alverson, D.L.; Freeber, M.H.; Murawski, S.A. and Pope, J.G., 1994. A Global assessment of fisheries by catch and discard. FAO. Fisheries Technical. 291 p.
6
Bihamta, M.R. and Zare Chahkoei, M.A., 2011. Principles of statistics for the natural resources sciences. Tehran Uniersity Publication. 300 p.
7
Bishop, J.M.; Ye, Y.; Foudari, H.M. and Jazzaf, S., 2008. Diurnal and nocturnal catchability of Kuwait commercial shrimps. Fisheries Research. Vol. 94, pp: 58-72.
8
Brewer, D.; Rawlinson, N.; Eayrs, S. and Burridge, C., 1998. An assessment of bycatch reduction devices in a tropical Australian prawn trawl fishery. Fisheries Research. Vol. 36, No. 2-3, pp: 195-215.
9
Blegvad, H.C. and Loppenthin, B., 1944. Fishes of the Iranian Gulf. Danish Scient. Invest. Iran, Einar Munksgaard, Copenhagen. 247 p.
10
Du Fresne, S.P.; Grant, A.R.; Norden, W.S. and Pierre, J.P., 2007. Factors affecting cetacean bycatch in a New Zealand trawl fishery. DOC Research & Development Series. Vol. 282, No. 18.
11
Eayrs, S., 2007. A Guide to by catch Reduction in Tropical Shrimp-Trawl Fisheries, revised ed. Food and Agricultural Organization, Rome. 115 p.
12
Engas, A. and Soldal, A.V., 1992. Diurnal variations in bottom trawl catch rates of cod and haddock and their influence on abundance indices. ICES Journal of Marine Science. Vol. 49, pp: 89-95.
13
FAO. 2009. Fishery Statistics Yearbook. Catches and Landings. FAO, Rome. 74 p.
14
Fischer, W. and Bianchi, B., 1984. FAO species identification sheets for fishery purposes. Western Indian Ocean (Fishing Area 51). Prepared and printed with the support of the Danish International Development Agency (DANIDA). FAO, Rome. Vol. 1-6.
15
Fonseca, P.; Campos, A.; Mendes, B. and Larsen, R.B., 2005. Potential use of a Nordmøre grid for by-catch reduction in a Portuguese bottom-trawl multispecies fishery. Fisheries Research. Vol. 73, No. 1-2, pp: 49-66.
16
Grimaldo, E.; Larsen, R.B.; Sistiaga, M.; Madsen, N. and Breen, M., 2009. Selectivity and escape percentages during three phases of the towing process for codends fitted with different selection systems. Fisheries Research. Vol. 95, No. 2-3, pp: 198-205.
17
Hermann, B., 2010. Experimental and analytical methods in evaluating trawl codend selectivity. Power point in Conference: SmartFish at Zhoushan, China. pp: 381-411.
18
Jennings, S.; Kaiser, M.J. and Reynolds, J.D., 2001. Marine Fsheries ecology. Oxford: Fishing News Books. 432 p.
19
Kaiser, M.J. and S.J. De Groot., 1999. Effects of Fishing on Non-target Species and Habitats: Biological, Conservation and Socio-economic Issues. Blackwell Science, Oxford (UK). pp: 21-25.
20
Kennelly, S.J., 1995. The issue of bycatch in Australia’s demersal trawls fisheries. Reviews in Fish Biology and Fisheries. Vol. 5, pp: 213-234.
21
Kotwicki, S.; Martin, M.H. and Laman, E.A., 2011. Improving area swept estimates from bottom trawl surveys. Fisheries Research. Vol. 110, pp: 198-206.
22
Mathews, C.P., 1987. The biology, assessment and management of M. affinis stock in Kuwait. Kuwait Bulletin of Marine Science. Vol. 10, pp: 3-36.
23
Parker, J.C., 1970. Distribution of juvenile brown shrimp (Penaeus aztecus Ires) in Galveston Bay, Texas, as related to certain hydrographic features and salinity. Contr. mar. Sci. Univ. Tex. Vol. 15, pp: 1-12.
24
Penn, J.W., 1981. A review of mark-recapture and recruitment studies on Australian penaeid shrimp. Kuwait Bull. mar. Sci. Vol. 2, pp: 227-245.
25
Sparre, P. and Venema, S.C., 1998. Introduction to tropical fish stock assessment, FAO Fisheries Technical Paper. 450 p.
26
Tonks, M.L.; Griffiths, S.P.; Heales, D.S.; Brewer, D.T. and Dell, Q., 2008. Species composition and temporal variation of prawn trawl bycatch in the Joseph Bonaparte Gulf, northewestern Australia. Fisheries research. Vol. 89, pp: 276-293.
27
Tom, M.; Shlagman, A. and Lewinsohn, C., 1984. The benthic phase of the life cycle of Penaeus semisulcatus De Haan (Crustacea Decapoda) along the southeastern coast of the Mediterranean. Pubbl. Staz. Zool. Napoli (I: Mar. Ecol.). Vol. 5, pp: 229-241.
28
UNEP (United Nations Environment Programme). 2002. Global Environmental Outlook 3. London and New York, Earthscan. 58 p.
29
Zeeberg, J.; Corten, A. and de Graaf, E., 2006. Bycatch and release of pelagic megafauna in industrial trawler fisheries off Northwest Africa. Fisheries research. Vol. 78, No. 2, pp: 186-195.
30
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تاثیر سم خالص سازی شده میکروسیستین (Microcystin-RR) از ریز جلبک (Microcystis aeruginosa) بر زنده مانی دافنی ماگنا ((1820 ,Daphnia magna (Straus) و تعیین غلظت کشنده آن (LC50-96h)
این تحقیق جهت بررسی تاثیر سم خالص سازی شده MC-RR) Microcystin-RR) از ریز جلبک Microcystis aeroginosa بر زنده مانی دافنی ماگنا (Daphnia magna) و تعیین غلظت کشنده این سم (LC50-96) انجام شد. برای انجام این آزمایش تعداد 21 عدد دافنی ماگنا در هر تکرار، در معرض غلظت های 0/5، 2، 10، 20 و 50 میکروگرم بر میلی لیتر سم MC-RR قرار گرفتند و میزان بقای دافنی ها برای مدت 24 تا 96 ساعت مورد محاسبه قرار گرفت. هم چنین یک تیمار به عنوان تیمار شاهد (بدون سم) در نظر گرفته شد. هر تیمار 3 تکرار داشت. با توجه به نتایج این تحقیق، سم میکروسیستین (MC-RR) تاثیر کشنده بر دافنی ماگنا داشت به طوری که حتی در کم ترین غلظت (غلظت 0/5) حدود 38 درصد تلفات مشاهده گردید و هیچ یک از دافنی ماگناها توانایی زنده ماندن در غلظت 2 میکرو گرم بر میلی لیتر سم خالص MC-RR به مدت 96 ساعت را نداشتند. قابل ذکر است توانایی زنده ماندن دافنی ها با افزایش غلظت سم، کاهش پیدا کرد، به طوری که در غلظت 10 میکرو گرم بر میلی لیتر سم، در روز دوم و در غلظت 20 و 50 میکرو گرم بر میلی لیتر سم، در روز اول تمامی دافنی ها از بین رفتند. میزان LC50-96 ،0/58 میکرو گرم بر میلی لیتر سم MC-RR به دست آمد. نتایج این تحقیق نشان داد که در غلظت 1/75 میکرو گرم بر میلی لیتر MC-RR، در مدت 96 ساعت، 99 درصد دافنی ها می میرند.
http://www.aejournal.ir/article_105577_ad312bd812dae883cbfd3fbc00cd7e24.pdf
2020-03-20
361
368
10.22034/aej.2020.105577
میکروسیستین
Microcystis aeroginosa
زنده مانی
دافنی ماگنا
h96-50LC
سعید
بلالی
saeed_balali85@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
سیدعباس
حسینی
hoseini_abbas@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
رسول
قربانی
rasulghorbani@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
محبی،ف.؛ محسن پورآذری،ع. وعاصم، ع.، 1391. بررسی جمعیت فیتوپلانکتونی و شاخص های جمعیتی در دریاچه سد ارس. مجله زیست شناسی ایران. دوره 25، شماره 2، صفحات 316 تا 328.
1
Abdel-Raouf, N.; Al-Homaidan, A. and Ibraheem, I., 2012. Microalgae and wastewater treatment. Saudi Journal of Biological Sciences. Vol. 19, No. 3, pp: 257-275.
2
Borwitzka, M. and Borowitzka, L., 1989. Micro-algae biotechnology. Cambridge University Press. Cambrige. 476 p.
3
Carmichael, W.W., 1981. Freshwater Blue-Green Algae (Cyanobacteria) Toxins- A Review. In: Carmichael W.W., (eds) The Water Environment. Environmental Science Research. Springer, Boston, MA. pp: 121-147.
4
Chislock, M.F.; Sarnelle, O.; Jernigan, L.M. and Wilson, A.E., 2013. Do high concentrations of microcystin prevent Daphnia control of phytoplankton? Water Research. Vol. 4, No. 7, pp: 1961-1970.
5
De bernardi, R.; Giussani, G. and Lasso Pedretti, E., 1981. The significance of blue-green algae as food for filterfeeding zooplankton: Experimental studies on Daphnia spp. fed Microcystis aeruginosa. Internationale Vereinigung für Theoretische und Angewandte Limnologie: Verhandlungen. Vol. 21, pp: 477-483.
6
Demott, R.W.; Zhang, Q. and Carmichael, W.W., 1991. Effects of toxic cyanobacteria and purified toxins on the survival and feeding of a copepod and three species of Daphnia. Limnology and Oceanography. Vol. 36, No. 7, pp: 1346-1357.
7
Fulton, R. and Paerl, H., 1987. Toxic and inhibitory effects of the blue-green alga Microcystis aeruginosa in herbivorous zooplankton. Journal of Plankton Research. Vol. 9, No. 5, pp: 837-855.
8
Gilbert, J.J., 1990. Differential effects of Anabaena afinis on cladocerans and rotifers: Mechanisms and implications for zooplankton community structure. Ecology. Vol. 71, No. 5, pp: 1727-1740.
9
Gliwicz, Z.M. and Lampert, W., 1990. Food thresholds in Daphnia species in the absence and presence of blue-green filaments. Ecology, Vol. 71, No. 2, pp: 691-702.
10
Hairston, N.G.Jr.; Holtmeier, C.L.; Lampert, W.; Weider, L.J.; Post, D.M.; Fischer, J.M.; Fox, J.A. and Gaedke, U., 2001. Natural selection for grazer resistance to toxic cyanobacteria: evolution of phenotypic plasticity? Evolution. Vol. 55, No. 11, pp: 2203-2214.
11
Harada, K.I.; Matsuura, K.; Suzuki, M.; Oka, H.; Watanabe, M.F.; Oishi, S.; Dahlem, A.M.; Beasley, V.R. and Carmichael, W.W., 1988. Analysis and purification of toxic peptides from cyanobacteria by reversed-phase high performance liquid chromatography. Journal of Chromatography A. Vol. 448, pp:275-283.
12
Ibelings, B.W. and Havens, K.E., 2008. Cyanobacterial toxins: a qualitative meta–analysis of concentrations, dosage and effects in freshwater, estuarine and marine biota. In: Hudnell, H.K., (eds) Cyanobacterial Harmful Algal Blooms: State of the Science and Research Needs. Advances in Experimental Medicine and Biology. Vol. 619, pp: 675-732.
13
Janse van Vuuren, S.; Taylor, J.; Gerber, A. and Van Ginkel, C., 2006. Easy identification of the most common freshwater algae. A guide for the identification of microscopic algae in South African freshwaters. ISBN 0-621-35471-6.
14
Jungmann, D.; Henning, M. and Juttner, F., 1991. Are the same compounds in Microcystis responsible for toxicity to Daphnia and inhibition of its filtering rate? International Review of Hydrobiology. Vol. 76, No. 1, pp: 47-56.
15
Komárek, J.; Kastovsky, J.; Mares, J. and Johansen, J.R., 2014. Taxonomic classification of cyanoprokaryotes (cyanobacterial genera), using a polyphasic approach. Preslia. Vol. 86, pp: 295-335.
16
Kuiper-Goodman, T.; Falconer, I. and Fitzgerald, J., 1999. Toxic cyanobacteria in water: A guide to their public health consequences, monitoring, and management. Chorus, I. and Bartram, J. editors. London: WHO E and FN Spon Publishers. pp: 113-153.
17
Lampert, W., 1981a. Inhibitory and toxic effects of blue-green algae on Daphnia. International Review of Hydrobiology. Vol. 66, No. 3, pp: 285-298.
18
Lampert, W., 1981b. Toxicity of blue-green Microcystis aeruginosa: Effective defense mechanism against grazing pressure by Daphnia. International Association of Theoretical & Applied Limnology. Vol. 21, pp: 1436-1440.
19
Lee, S.J.; Jang, M.H.; Kim, H.S.; Yoon, B.D. and Oh, H.M., 2000. Variation of microcystin content of Microcystis aeruginosa relative to medium N: P ratio and growth stage. Journal of Applied Microbiology. Vol. 89, No. 2, pp:323-329.
20
Mohammadyari, A.; Ghassemzadeh, F.; Mirshamsi, O.; Aliabadian, M. and Atashbar, B., 2017. Phylogeny of Iranian species of the genus Daphnia O. F. Müller, 1785 (Crustacea: Branchiopoda: Anomopoda) based on morphological characters.Iranian Journal of Animal Biosystematics. Vol.13, No. 1, pp: 77-106.
21
Mohebbi, F.; Riahi, H.; Sheidaei, M. and Shariatmadari, Z., 2016. Phytoplankton of Aras dam reservoir (Iran): an attempt to assess water quality. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 15, No. 4, pp: 1318-1336.
22
Mohebbi, F.; Riahi, H.; Sheidaei, M.; Shariatmadari, Z. and Manaffar, R., 2015. Environmental control of the dominant phytoplankton in Aras Reservoir (Iran): A multivariate approach. Lakes & Reservoirs: Science, Policy and Management for Sustainable Use. Vol. 20, No. 3, pp: 206-215.
23
Nizan, S.; Dimentman, C. and Shilo, M., 1986. Acute toxic effects of the cyanobacterium Microcystis aeruginosa on Daphnia magna. Limnology and Oceanography Journal. Vol. 31, No. 3, pp: 497-502.
24
O’Neil, J.; Davis, T.; Burford, M. and Gobler, C., 2012. The rise of harmful cyanobacteria blooms: the potential roles of eutrophication and climate change. Harmful Algae. Vol. 14, pp: 313-334.
25
Park, J.; Jin, F.; Lim, B.; Park, K. and Lee, K., 2010. Ammonia removal from anaerobic digestion effluent of livestock waste using green alga: Scenedesmus sp. Bioresource Technology. Vol. 101, No.22, pp: 8649-8657.
26
Penaloza, R.; Rojas, M.; Vila, I. and Zambrano, F., 1990. Toxicity of a soluble peptide from Microcystis sp. to zooplankton and fish. Freshwater Biology. Vol. 24, No. 2, pp: 233-240.
27
Porter, K. and Orcutt, J., 1980. Nutritional adequacy, manageability and toxicity as factors that determine the food quality of green and blue green algae for Daphnia. In: Kerfoot WCH, editor. Evolution and ecology of zooplankton. Hanover, NH: Communities University Press. pp: 282-291.
28
Ressom, R.; Soong, F.S.; Fitzgerald, J.; Turczynowicz, L.; El Saadi, O.; Roder, D.; Maynard, T. and Falconer, I., 1994. Health effects of toxic cyanobacteria (Blue-Green Algae) National Health and Medical Research Council, Canberra: Australian Government Publishing Service. 108 p.
29
Shih, P.M.; Wu, D.; Latifi, A.; Axen, S.D.; Fewer, D.P.; Talla, E.; Calteau, A.; Cai, F.; Tandeau de Marsac, N.; Rippka, R.; Herdman, M.; Sivonen, K.; Coursin, T.; Laurent, T.; Goodwin, L.; Nolan, M.; Davenport, K.W.; Han, C.S.; Rubin, E.M.; Eisen, J.A.; Woyke, T.; Gugger, M. and Kerfeld, C.A., 2012. Improving the coverage of the cyanobacterial phylum using diversity-driven genome sequencing. PNAS. Edited by Robert Haselkorn. University of Chicago. 60 p.
30
Skulberg, O. and Skulberg, R., 1985. Planktic species of Oscillatoria (Cyanophyceae) from Norway. characterization and classification. Archiv fur Hydrobiologie. Vol. 71, No. l, pp: 157-174.
31
Stangenberg, M., 1968. Toxic effects of Microcystis aeruginosa Kg. extracts on Daphnia longispina 0. F. Muller and Eucypris virens Jurine. Hydrobiologia, Vol. 32, No. 1-2, pp: 81-87.
32
Sun, L.W.; Jiang, W.J.; Sato, H.; Kawachi, M. and Lu, X.W., 2016. Rapid Classification and Identification of Microcystis aeruginosa Strains Using MALDI-TOF MS and Polygenetic Analysis. PloS one. Vol. 11, No. 5, p: e0156275.
33
World Health Organization. 1998. Guidelines for drinking water quality: Addendum to Volume 2 2nd Ed Geneva: Health criteria and other supporting information.
34
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی خصوصیات ضدباکتریایی همولنف دوکفهای های Cerastoderma و Didacna سواحل جنوبی دریای خزر
هدف از مطالعه حاضر، ارزیابی خصوصیات ضدباکتریایی همولنف دوکفه ای های Cerastoderma و Didacna سواحل جنوبی دریای خزر بود. برای تعیین فعالیت ضدمیکروبی اولیه از روش انتشار دیسک در آگار، ماکرودایلوشن و میکرودایلوشن و برای انتخاب درصد غلظت عصاره ها، از رقت های مختلف 25%، 12/5، 6/25، 3/125، 1/56 درصد استفاده شد. بیش ترین و کم ترین قطر هاله عدم رشد در رقت های مختلف از همولنف دوکفه ای ها بر علیه باکتری (ATC C25922 (Escherichia coli در دوکفه ای Cerastoderma مربوط به غلظت های 25% و 1/56 و در دوکفه ای Didacna مربوط به غلظت های 25% و 3/125 بود. هم چنین در باکتری NCTC5056) Klebsiella pnuemoniae) بیش ترین و کم ترین قطر هاله عدم رشد در همولنف دوکفه ای Cerastoderma به ترتیب مربوط به غلظت های 25% و 3/125 و در دوکفه ای Didacna مربوط به غلظت های 25% و 3/125 بود. در باکتری Entroccus faccium بیش ترین و کم ترین قطر هاله عدم رشد در دوکفه ای Cerastoderma مربوط به غلظت های 25% و 3/125 و در دوکفه ای Didacna مربوط به غلظت های 25% و 1/56 بود. با افزایش غلظت همولنف، فعالیت ضدباکتری آن به طور معنی داری افزایش پیدا کرد (0/05>p). همولنف صدف Didacna دارای MIC پایین تری در مقایسه با صدف Cerastoderma بر علیه باکتری های E. coli و K. pnuemoniae بود اما میزان MIC همولنف صدف Cerastoderma در مقایسه با صدف Didacna بر علیه باکتری Entroccus faccium کم تر بود (0/05>p). بنابراین با توجه به یافته های این پژوهش Cerastoderma و Didacna می تواند به عنوان منبعی با ترکیباتی با ارزش و دارای توان زیست فعالی در تهیه داروهای ضدمیکروبی طبیعی مورد استفاده قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_105614_7aff72a114affb8ceb88be4128eb6052.pdf
2020-03-20
369
374
10.22034/aej.2020.105614
ماکرودایلوشن
میکرودایلوشن
ضدباکتری
همولنف
Cerastoderma
Didacna
محدثه
صلواتی خوشقلب
salavat@yahoo.com
1
گروه بیولوژی دریا، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
AUTHOR
اعظم
مشفق
noshfeghazam@gmail.com
2
گروه زیست شناسی، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
LEAD_AUTHOR
محبوبه
سترکی
doctor.setorgi@gmail.com
3
گروه زیست شناسی، واحد ایذه، دانشگاه آزاد اسلامی، ایذه، ایران
AUTHOR
بیرشتین، ی.، 1379. اطلس بی مهرگان دریای خزر. ترجمه دلیناد، ل. و نظری، ف.، چاپ اول. تهران. مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. مدیریت اطلاعات علمی و روابط بین الملل. 611 صفحه.
1
Abubakar, L.; Mwangi, C.; Uku, J. and Ndirangu, S., 2012. Antimicrobial activity of various extract of the sea urchin Tripneustes gratilla (Echinoidea). African Journal of Pharmacology and Therapeutics. Vol. 1, No. 1, pp: 19-23.
2
Amy, E.B. and Anderson, R.S., 2001. Antibacterial activities of oyster (Crassostrea virginica) and mussel (Mytilus edulis and Geukensia demissa) plasma. Aquatic Living Resources. Vol. 14, No. 6, pp: 343-349.
3
Arumugan, M.; Romestand, B. and Torreilles, J., 2000. Nitrite released in haemocytes from Mytilus galloprovincialis, Crassostrea gigas and Ruditapes decussatus upon stimulation with phorbol myristate Acetat.Aquatici living resource. Vol. 13, pp: 173-177.
4
Canesi, L.; Gallo, G.; Gavioli, M. and Pruzzo, C., 2002. Bacteria–hemocyte interactions and phagocytosis in marine bivalves. Microsc Res Tech. Vol. 57, pp: 469-476.
5
Casas, S.; Comesana, P. and Villalba, A., 2011. Comparison of untibactericla activitiy in the hemolymph of marine bivalves from Galicia (NW Spain). journal of invertebrate pathology. Vol. 106, pp: 343-345.
6
Jennafer, C.M. and James, E.B., 2018. Responses of an oyster host (Crassostrea virginica) and its protozoan parasite (Perkinsus marinus) to increasing air temperature. Peer J. Vol. 6, pp: e5046.
7
Defer, D.; Bourgougnon, N. and Fleury, Y., 2009. Screening for antibacterial and antiviral activities in three bivalve and two gastropod marine molluscs. Aquaculture. Vol. 293, pp: 1-7.
8
Falanga, A.; Lombardi, L.; Franci, G.; Vitiello, M.; Iovene, M.R.; Morelli, G.; Galdiero, M. and Galdiero, S., 2016. Marine antimicrobial peptides: nature provides templates for the design of novel compounds against pathogenic bacteria. International journal of molecular sciences. Vol. 17, No. 5, pp: 785.
9
Hardy, S.W.; Fletcher, T.C. and Gerrie, L.M., 1976. Factors in hemolymph of the mussel, Mytilus edulis., of possible significance as defense mechanisms. Biochem Soc Trans. Vol. 4, pp: 473-475.
10
Madhumathi, V.; Deepa, P.; Jeyachandran, S.; Manoharan, C. and Vijayakumar, C., 2011. Antimicrobial Activity of Cyanobacteria Isolated from Freshwater Lake. International Journal of Microbiological Research. Vol. 2, No. 3, pp: 213-216.
11
Malve, H., 2016. Exploring the ocean for new drug developments: Marine pharmacology. Journal of Pharmacy and Bioallied Science. Vol. 8, No. 2, pp: 83-91.
12
Manivannan, S.; Balamurugan, M.; Parthasarathi, K.; Gunasekaran, G. and Ranganathan, L.S., 2009. Effect ofvermicompost on soil fertility and crop productivity-beans (Phaseolus vulgaris). J. Environ. Biol. Vol. 30, pp: 275-281.
13
Marshall, S.H. and Arenas, G., 2003. Antimicrobial peptides: A natural alternative to chemical antibiotics and a potential for applied biotechnology. Electro. J. Biotech. Vol. 6, pp: 1-14.
14
CLSI. 2013. Performance standards for antimicrobial disk and dilution susceptibility tests for bacteria isolated from animals; approved standard, Eleventh edition. Vol. 3, No. 1.
15
Pipe, R.K., 1990. Hydrolytic enzymes associated with the granular haemocytes of the marine mussel Mytilus edulis. Histochem J. Vol. 22, pp: 595-603.
16
Roch, Ph.; Yang, Y.; Toubiana, M. and Aumelas, A., 2008. NMR structure of mussel mytilin, and antiviral-antibacterial activites of derived synthetic Peptides.Developmental and Comparative Immunology. Vol. 32, pp: 227-238.
17
Sperstad, S.V.; Haug, T.; Blencke, H.M.; Styrvold, O.B.; Li, C. and Stensvåg, K., 2011. Antimicrobial peptides from marine invertebrates: challenges and perspectives in marine antimicrobial peptide discovery. Biotechnology advances. Vol. 29, No. 5, pp: 519-530.
18
Sugesh, S. and Mayavu, P., 2013. Antimicrobial activities of two edible bivalves M. meretrix and M. casta. Pakistan journal of Biological Sciences. Vol. 16, No. 1, pp: 38-43.
19
Tincu, J.A. and Taylor, S.W., 2004. Antimicrobial peptides from marine invertebrates. Antimicrobial agents and chemotherapy. Vol. 48, No. 10, pp: 3645-3654.
20
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی رژیم و ترکیبات غذایی لاشه خیار دریایی گونه Stichopus herrmanni در محدوده آب های استان هرمزگان – جزیره قشم
در این مطالعه رژیم غذایی و ترکیبات تقریبی گونه خیار دریایی Stichopus herrmanni در استان هرمزگان مورد بررسی قرار گرفت. نمونه برداری ها به صورت ماهانه فصلی در پاییز و زمستان سال 1395 و بهار و تابستان سال 1396 با عملیات غواصی از سه ایستگاه انحام گرفت. در هر ایستگاه در هر یک سه نمونه و جمعاً 36 نمونه انجام و جهت زیست سنجی و مطالعات رژیم غذایی و آنالیز ترکیبات تقریبی رطوبت، پروتئین، چربی و خاکستر به آزمایشگاه منتقل گردیدند. شاخص طول نسبی روده (RLG) این خیار دریایی برابر 0/3±2/2 بوده که نشان دهنده همه چیزخوار بودن گونه S. herrmanni آن می باشد. از کل نمونه های مطالعه شده 65/89 درصد دارای معده پر و بقیه (34/11 درصد) دارای معده خالی بودند. میزان خوردن غذا از زمستان شروع و در تابستان فصل تخم ریزی، به حداکثررسید به طوری که بیش ترین مقدار شاخص شدت تغذیه در فصل تخم ریزی 1/01±7/866 به دست آمد. بعد از آنالیز محتویات روده مشخص شد که شاخص ارجحیت تغذیه براساس نوع محتویات موجود در لوله گوارش به ترتیب: شن و گل و لای، فرامینفرا، شکم پایان، دیاتومه ها، دوکفه ای ها، جلبک ها، آمفی پودها، رسوبات آلی، تماتودها، فلس و به ندرت سخت پوستان کوچک بوده از پلانکتون ها: Chlorella stigmatophora, Skeletonema costatum, Oocystis lacustris, Coscinodis cuscentralis و بسیار معدود از سایر گونه ها تغذیه می کند که بسیار تحت تاثیر تراکم و زمانی و گونه ای این پلانکتون ها در آب محیط پیرامونی است. گرچه در پاییز و زمستان نیز تغذیه دارند ولی شاخص پر بودن معده در آن ها عمده تغذیه را به دو فصل بهار و به خصوص تابستان نسبت می دهد و این موضوع رابطه تنگاتنگ شرایط دمایی با تغذیه فعال این خارپوست را نشان می دهد. در بررسی ماهانه ترکیبات تقریبی، بیش ترین سطح پروتئین بر حسب درصد وزن خشک (47/36±0) بیش ترین درصد رطوبت (9/33±88/3)، بالاترین درصد چربی (0/02± 0/8) و بالاترین درصد خاکستر (9/33±37/0) مشاهده گردید.
http://www.aejournal.ir/article_105636_078f67048c52ef4009e4737e61b467df.pdf
2020-03-20
375
384
10.22034/aej.2020.105636
Stichopus herrmanni
رژیم غذایی
ترکیبات تقریبی لاشه
استان هرمزگان
جزیره قشم
شهرام
دادگر
shdadgar@yahoo.com
1
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
محمود
حافظیه
jhafezieh@yahoo.com
2
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
منصور
شریفیان
sharif_23m@yahoo.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
رشیدی، ف.؛ کامرانی، ا. و شریف رنجبر، م.، 1396. بررسی رژیم غذایی خیاردریایی گونه S. herrmanniبا استفاده از شاخص های تغذیه در آبسنگ های مرجانی جنوب شرقی جزیره قشم. مجله اقیانوس شناسی. سال 8، شماره 29، صفحات 35 تا 41.
1
رضوانی، ف. و محمدزاده، ف.، 1393. رژیم غذایی خیار دریایی شنی در سواحل شمالی جزیره قشم، خلیج فارس. مجله آبزیان و شیلات. سال 19، شماره 5، صفحات 45 تا 50.
2
قبادیان، ف.، 1388. بررسی بیولوژی تولیدمثل خیار دریایی گونه H. leucospilota در منطقه بستانه هرمزگان. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر.
3
Afkhami, M.; Ehsanpour, M.; Khazaali, A.; Kamrani, E.; Mokhlesi, A. and Darvish Bastami, K., 2012. Sea cucumber fisheries of Qeshm Island, Persian Gulf. SPC Beche-de-mer Information Bulletin. Vol. 32, pp: 60–61.
4
Al-Hussain, A.H., 1949. On the functional morphology on the alimentary track of some fishes in relation to difference in there feeding habits. Quarterly Journal of Microscopical Science. Vol. 9, No. 7, pp: 190-240.
5
AOAC. 2000. Association of Official Analytical Chemists. 17th Edn, AOAC, Washington, DC. pp: 21-447.
6
Aydin, M.; Sevgili, H.; Tufan, B.; Emre, Y. and Köse, S., 2011. Proximate composition and fatty acid profile of three different fresh and dried commercial sea cucumbers from Turkey. International Journal of Food Science and Technology. Vol. 46, pp: 500-508.
7
Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology. South Asia publishers, New Delhi, India. 157 p.
8
Bonham, K. and Held, E., 1961. Ecological observations on the sea cucumbers Holothuria atra and H. leucospilota at Rongelap Atoll, Marshall Islands. Pacific Science. Vol. 17, pp: 305-314.
9
Bruckner, A.W.; Johnson, K.A. and Field, J.D., 2003. Conservation Strategies for a sea cucumber: Can a CITES Apendix II. Listing Promote Sustainable International Trade? SPC Bech-De-Mer Information Bulletin. Vol. 18, pp: 24-32.
10
Castro, P. and Huber, M.E., 2008. Marine biology.3th ed. Philadelphia: McGraw-Hill. 444 p.
11
Chang-Lee, M.V.; Price, R.J. and Lampila, L.E., 1989. Proximate composition of some sea cucumbers. Journal of Food Science. Vol. 54, pp: 567-572.
12
Chen, J., 2004. Present status and prospects of sea cucumber industry in China. In: Lovatelli, A.; Conand, C.; Purcell, S.W.; Uthicke, S.; Hamel, J.F. and Mercier, A., (Eds.), Advance in Sea Cucumber Aquaculture and Management. FAO Fisheries Technical Paper 463. FAO, Rome. pp: 25-38.
13
Chen, S.; Xue, C.; Yin, L.; Tang, Q.; Yu, G. and Chai, W., 2011. Comparison of structures and anticoagulant activities of fucosylated chondroitin sulfates from different sea cucumbers. Carbohydr. Polym. Vol. 83, pp: 688-696.
14
Euzen, O., 1987. Food habits and diet composition of some fish of Kuwait. Kuwait Bulletin of Marine Science. Vol. 9, pp: 65-85.
15
Fuerte, F.O.L.; Beltrones, D.A.S. and Navarro, N., 2009. L6 Benthic diatoms associated with mangrove environments in the northwest region of México. 206 p.
16
Gao, L.; Hu, J.; Zhang, X.; Ma, R.; Gao, J.; Li, S.; Zhao, M.; Miao, Z. and Chai, T., 2014. Dissemination of ESBL producing Escherichia coli of chicken origin to the Nearby River water. Journal of Mol. Microbiol. Biotechnol. Vol. 24, pp: 279-285.
17
Halim, A.b., 2014. Preliminary Genetic analysis on sea cucumber from Sampadi Island. Sarawak, Universiti Malaysia Sarawak. 38 p.
18
Hyslop, E.J., 1980. Stomach contents analysis. A review of methods and their application. Journal Fish Biology. Vol. 17, pp: 411-429.
19
James, D.B., 2001. Twenty sea cucumbers from seas around India. Naga, the ICLARM Quarterly. Vol. 24, No. 1-2, pp: 4-8.
20
James, D.B., 2001. Twenty sea cucumbers from seas around India. Naga, Vol. 24, No. 1-2, pp: 4-7.
21
Mamelona, J.; Pelletier, E.; GirardLalancette, K.; Legault, J.; Karboune, S. and Kermasha, S., 2007. Quantiication of phenolic contents and antioxidant capacity of Atlantic sea cucumber, Cucumaria frondosa. Food Chemistry. Vol. 104. pp: 7-104.
22
Massin, C., 1996. The holothurians of Easter Island. Bulletin de l’Institut Royal des Sciences Naturelles de Belgique, Biologie. Vol. 66, pp: 152-178.
23
Massin, C., 1982. Effects of feeding on the environment: Holothuroidea. In: Jangoux M. and Lawrence J.M., (Eds). Echinoderm nutrition. Rotterdam: A.A. Balkema. pp: 493-496.
24
Moriarty, D.J.W., 1982. Feeding of Holothuria atra and Stichopus chloronotus on bacteria, organic carbon and organic nitrogen in sediments of the Great Barrier Reef. Australia Journal Marine Freshwater Reaserch. Vol. 33, pp: 255-263.
25
Omran, N.E., 2013. Seacucumber of Africa. African journal of Biotechnology. Vol. 12, No. 35, pp: 5466-5472.
26
Pawson, L., 2007. Phylam Echinodermata. Zootaxa. Vol. 1668, pp: 749-764.
27
Pechenik, J.A., 2005. Biology of the Invertebrates. Fifth Edition. Mc-Graw-Hill. New York, USA. 590 p.
28
Purcell, S.W.; Samyn, Y. and Conand, Ch., 2012. Commercially important sea cucumbers of the world. Food and agriculture organization of the United Nations. FAO Species Catalogue for Fishery Purposes, No. 6. FIR/CAT. Vol. 6, 182 p.
29
Salarzadeh, A.; Afkhami, M.; Ehsanpour, M.; Mehvari, A. and Bastami, K.D., 2013. Identification of sea cucumber species around Hengam Island (Persian Gulf, Iran). Marine Biodiversity Records. 6 p.
30
Smirnov, A.V.; Gebruk, A.V.; Galkin, S.V. and Shank, T., 2000. New species of holothurian (Echinodermata: Holothuroidea) from hydrothermal vent habitats. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. Vol. 80, No. 2, pp: 321-328.
31
Richmond, A., 2008. Handbook of microalgal culture: biotechnology and applied phycology. New York: John Wiley & Sons. 588 p.
32
Taboada, M.C.; Gonzalez, M. and Rodriguez, E., 2000. Value and effects on digestie enzymes and serum lipids of the marine invertebrate Holothuria forskali. Nutr Res. Vol. 23, pp: 1661-1670.
33
Taylor, J.C.; Harding, W.R. and Archibald, C.G.M., 2007. An illustrated guide to some common diatom species from South Africa. WRC report TT 282/07. Water Research Commission, Pretoria, South Africa. 225 p.
34
Tolon, M.T.; Emiroglu, D.; Gunay, D. and Ozgul, A., 2015. Sea cucumber (Holothuria tubulosa Gmelin, 1790) culture under marine fish net cages for potential use in integrated multi-trophic aquaculture (IM TA). Indian Journal of Geo Marine Sciences. Vol. 46, pp: 749-756.
35
Uthicke, S., 1999. Sediment bioturbation and impact of feeding activity of Holothuria (Halodeima) atra and Stichopus chloronotus, two sediment feeding holothurians, at Lizard Island, GBR. Buletin of Marine Science. Vol. 64, pp: 129-141.
36
Vergara, W. and Rodríguez, A., 2016. Nutritional composition of sea cucumber Isostichopus sp. Natural Resources. Vol. 7, pp: 130-137.
37
Wen, J.; Hu, C. and Fan, S., 2010. Chemical composition and nutritional quality of sea cucumbers. J. Sci. Food Agric. Vol. 90, pp: 2469-2474.
38
Zacharia, P.U.; Abdurahiman, K.P. and Mohamed, K., 2004. Methods of stomach content analysis of fishes. Winter School on Towards Ecosystem Based Management of Marine Fisheries Building Mass Balance Trophic and Simulation Models. pp: 148-158.
39
Zhong, Y.; Ahmad Khan, M. and Shahidi, F., 2007. Compositional characteristics and antioxidant properties of fresh and processed sea cucumber (Cucumaria frondosa). J. Agric. Food Chem. Vol. 55, pp: 1188-1192.
40
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی کیفیت آب و وضعیت تروفی تالاب بیشه دالان بروجرد برای زیست آبزیان
تعیین شرایط کیفیت آب و وضعیت تروفی یکی از روش های ارزیابی و بررسی تعادل اکولوژیک اکوسیستم های تالابی می باشد، زیرا پایداری و تداوم بهره وری بر پایه این اکوسیستم های منحصر به فرد، نیازمند مدیریت صحیح پایش و کنترل شریط محیطی آن ها دارد. بنابراین انجام مطالعات زیستی و اکولوژیکی، قبل از هرگونه استقرار فعالیت ضروری می باشد. تالاب بیشه دالان به مساحت 913/5 هکتار یکی از بزرگ ترین تالاب های استان لرستان که در جنوب شهرستان بروجرد و حاشیه دشت سیلاخور قرار دارد. در این پژوهش برای تعیین کیفیت آب برای زیست آبزیان از شاخص کیفیت آب (WQI) براساس محاسبه 5 پارامتر: نیتریت (NO2)، نیترات (NO3)، کدورت (TURB)، اکسیژن محلول (DO)، اسیدیته (PH) و برای ارزیابی وضعیت تروفی کارلسون (TSI) براساس فسفات کل (TP)، ازت کل (TN) و نسبت فسفر به ازت (PN) از آمار ویژگی های فیزیکی و شیمیایی چهار ایستگاه نمونه برداری آب تالاب بیشه دالان در تابستان 1396 استفاده گردید. نتایج پژوهش نشان داد که بر اساس شاخص کیفیت آب (WQI) این تالاب برای زیست آبزیان در ایستگاه های نمونه برداری کانال سیمانی پایین دست روستای کپر جودکی و زهکش منطقه گنجینه دارای کیفیت فقیر، در ایستگاه زهکش عمود بر کانال سیمانی روستای کپرجودکی دارای کیفیت خوب و در ایستگاه تالاب بیشه دالان رودخانه گله رود کیفیت آب در رده خیلی فقیر قرار دارد و براساس شاخص تروفی کارلسون (TSI) سطح تروفی تالاب بیشه دالان از شرایط تروفی مزوتروفیک خفیف و ورود به شرایط مزوتروفیک می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_105641_9c60aaa6675d550c611adf4a2fe20cf7.pdf
2020-03-20
385
392
10.22034/aej.2020.105641
کیفیت آب
وضعیت تروفی
شاخص WQI
شاخص کارلسون (TSI)
تالاب بیشه دالان
شهرستان بروجرد
مهدی
مهدی نسب
mehdi_4531@yahoo.com
1
باشگاه پژوهشگران و نخبگان جوان، واحد خرم آباد، دانشگاه آزاد اسلامی، خرم آباد، ایران
LEAD_AUTHOR
اداره کل محیط زیست استان لرستان. 1397. اندازه گیری خصوصیات فیزیکی و شیمیایی آب تالاب بیشه دالان. معاونت نظارت و پایش، واحد آزمایشگاه.
1
ایزدخواستی، ز.؛ اسماعیلی ساری، ع.؛ فلاحی کپورچالی، م.؛ امیری، م.ج. و کرمی، ش.، 1393. بررسی وضعیت تروفی با مقایسه شاخص های فیزیکی، شیمیایی و بیولوژیکی (مطالعه موردی: ساحل شهرستان بندر انزلی). فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 6، شماره 3، صفحات 187تا 196.
2
سعادتی، ح.؛ شبعانعلی، غ.، شریفی، ف. و ایوب زاده، س.ع.، 1385. بررسی اثرات تغییر کاربری اراضی در رواناب سطحی مدل شبیه سازی. مجله منابع طبیعی ایران. دوره 59، شماره 2، صفحات 301 تا 313.
3
صمدی، ج.، 1394. بررسی تاثیر مکانی- زمانی کمی و کیفی پساب های کاربری اراضی بر آلودگی تالاب چغاخور با استفاده از شاخص IRWQI و روش های آماری. فصلنامه تحقیقات منابع آب ایران. سال 11، شماره 3، صفحات 159 تا 171.
4
عابدینی، علی.؛ میرزاجانی، ع.ر. و فلاحی، م.، 1396. وضعیت فیزیکوشیمیایی آب و سطح تغذیه گرایی تالاب انزلی. مجله علمی شیلات ایران. سال 26، شماره 6، صفحات113 تا 123.
5
فتحی، پ.؛ ابراهیمی، ع.؛ میرغفاری، ن. و اسماعیلی، ع.، 1394. بررسی تغییرات زمانی و مکانی کیفیت آب تالاب چغاخور با استفاده از شاخص کیفی آب (WQI). مجله بوم شناسی آبزیان. سال 5، شماره 3، صفحات 41 تا 50.
6
فلاح، م.؛ پیرعلی زفره ئی، ا.ر. و هدایتی، س.ع.ا.، 1397. ارزیابی کیفیت آب با استفاده از روش TOPSIS در تالاب بین المللی انزلی. مجله سلامت و محیط زیست. دوره 11، شماره 2، صفحات 225 تا 236.
7
فلاح، م.؛ پیرعلی زفره ئی، ا.ر. و ابراهیمی درچه، ع.، 1397. ارزیابی وضعیت تروفی تالاب بین المللی انزلی با استفاده از شاخص کارلسون (TSI). مجله پژوهش آب ایران. جلد 12، شماره 1، شماره پیاپی 28، صفحات 21 تا 29.
8
مهدی نسب، م. و میرزایی، ر.، 1397. ارزیابی کیفیت و برآورد حجم تغییرات پهنه آب تالاب های شهرستان پلدختر. مجله اکوبیولوژیکی تالاب. دوره 10، شماره 4، صفحات 55 تا 68.
9
میرزاجانی، ع.ر.؛ عباسی، ک.؛ سبک آرا، ج.؛ مکارمی، م.؛ عابدینی،ع. و صیادبورانی، م.، 1391. لیمنولوژی دریاچه الیگومزوتروف تهم در استان زنجان. مجله زیست شناسی ایران. جلد 25، شماره 1، صفحات 74 تا 89.
10
Abrahão, R.; Carvalho, M.W.; da Silva Jứnior, R.; Machado, T.T.V.; Gadelha, C.L.M. and Hernandez, M.I.M., 2007. Use of Index Analysis to Evaluate the Water Quality of a Stream Receiving Industrial Effluents. Water Science and Technology. Vol. 33, No. 4, pp: 459-465.
11
Ahipathy. M.V. and Puttaiah, E.T., 2006. Ecological characteristics of Vrishabhavathy River in Bangalore (India). Environmental Geology. Vol. 49, No. 8, pp: 1217- 1222.
12
Al-Abbawy, D., 2012. Assessment of trophic status for Shatt Al-Arab River using trophic state index (TSI). Journal of Basrah Researches (Sciences). Vol. 38, No. 3, pp: 36-44.
13
Alobaidy, A.H.; Abid, M.J. and Maulood, H.S., 2010. Application of water quality index for assessment of Dokan Lake ecosystem, Kurdistan Region, Iraq. Water Resource and Protection. Vol. 2, pp: 792-798.
14
Boyacioglu, H., 2007a. Surface water quality assessment by environ metric methods. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 131, No. 1-3, pp: 371-376.
15
Brönmark, C. and Hansson, L.A., 2005. Translated by Hoseyni N. The biology of lakes and ponds. Second edition. 300 p.
16
Bronmark, C. and Hansson, L., 2005. The biology of lakes and ponds, Oxford university press. Oxford.
17
Carlson, R.E., 1980. More complication in the chlorophyll secchi disk relationship, limnology and oceanography. Vol. 25, pp: 361- 369.
18
Carlson, R.E. and Simpson, J., 1996. A Coordinators guide to volunteer lake monitoring methods. North American lake management society, Usa.
19
Chougule, M.B.; Wasif, A.L. and Naik, V.R., 2009. Assessment of Water Quality (wqi) for Monitoring Pollution of River Panchganga at ichalkarnji. Proceedings of International Conference Energy and Environment, Chandigarh. pp: 122- 127.
20
City of Lakeland. 2001. Water Quality Report, Florida 1988-2000. USA. [Accessed 20 February 2005]. Available from World Wide Web: http://www.polkWateratlas.usf.edu/upload/documents/lakeland_lakereport. pdf. 37 p.
21
Kannel, P.R.; Lee, S.; Lee, Y.; Kanel, S.R. and Khan, S.P., 2007. Application of water quality indices and dissolved oxygen as indicators for river water classification and urban impact assessment. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 132, No. 1-3, pp: 93-110.
22
Karakaya, N. and Evrendilek, F., 2009. Water Quality time series for Big Melen Stream (Turkey): Its decomposition analysis and comparison to upstream. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 165, No. 1-4, pp: 125-136.
23
Kratzer, C.R., 1980. A Carlson type trophic state index for nitrogen in florida lakes. Water, res. Bull. Vol. 17, pp: 713-715.
24
Li, X.; Manman, C. and Anderson, B.C., 2009. Design and performance of a water quality treatment wetland in a public park in shanghai, china. Engineering. Vol. 35, pp: 18- 24.
25
Lodh, R.; Paul, R.; Kurmakar, B. and Das, M.K., 2014. physicochemical studies of water quality with special reference to ancient lakes of Udaipur City, Tripura, India. International Journal of Scientific and Research Publication. Vol. 42, pp: 2250-3153.
26
Lu, X.; Li, L.Y.; Lei, K.; Wang, L.; Zhai, Y. andZhai, M., 2010. Water quality assessment of Wei River, China using fuzzy synthetic evaluation. Environ Earth Sci. Vol. 60, No. 8, pp: 1693-1699.
27
Lumb, A.; Halliwell, D. and Sharma, T., 2002. Canadian Water Quality Index (CWQI) to monitor the changes in water quality in the Mackenzie River-Great Bear. In: Proceedings of the 29th Annual Aquatic Toxicity Workshop. (Oct. 21-23). Whistler, B.C. Canada.
28
Nixon, S. and Trent, Z., 2003. Europe’s water: An indicator-based assessment, European environment agency.
29
Nyenje, P.M.; Foppen, J.W.; Uhlenbrook, S.; Kulabako, R. and Muwanga, A., 2010. Eutrophication and nutrient release in urban areas of sub-Saharan Africa A review. Science of the Total Environment. Vol. 408, pp: 447-455.
30
Padisak, J.; Borics, G.A.; Feh´er, G.; Grigorszky, I.A.; Oldal, I.; Schmidt, A. and Zambone-Doma, Z., 2003. Dominant species, functional assemblages and frequency of equilibrium phases in late summer phytoplankton assemblages in Hungarian small shallow lakes. Hydrobiologia. Vol. 502, pp: 157-168.
31
Ramakrishnaiah, C.R.; Sadashivaiah, C. and Ranganna, G., 2009. Assessment of water quality index for the ground water in Tumkur Taluk. E-Journal of Chemistry. Vol. 6, No. 2, pp: 523-530.
32
Simoes, F.; Moreira, A.; Bisinoti, M.C.; Gimenez, S. and Santos, M., 2008. Water quality index as a simple indicatorm of aquaculture effects on aquatic bodies. Ecological Indicators. Vol. 38, pp: 476-480.
33
Zhang, T.; Zeng, W.H.; Wang, S.R. and Ni, Z.K., 2014. Temporal and spatial changes of water quality and management strategies of Dianchi lake in southwest China. Hydrology and Earth System Sciences. Vol. 18, No. 4, pp: 1493-1502.
34
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی کیفیت آب رودخانه های بابلرود و خرون جهت زیست آبزیان و پرورش ماهی براساس شاخص BCWQI
با توجه به اهمیت رودخانه های بابلرود و خرون در تامین آب کشاورزی و پرورش ماهی اطراف این رودخانه ها و هم چنین تخلیه آلاینده های متعدد به آن ها، ارزیابی کیفی آب این رودخانه ها ضروری به نظر می رسد. از طرفی ارائه تصویر صحیح از وضعیت کیفی آب های سطحی باعث می گردد تا هر گونه تصمیم گیری مدیریتی که اثرات زیست محیطی آن به صورت مستقیم و یا غیرمستقیم متوجه آب های سطحی کشور باشد، با آگاهی بیش تری اتخاذ گردد. در این تحقیق که از نوع مقطعی می باشد، نمونه برداری در طی یک دوره یک ساله (از شهریور 1397 تا شهریور 1398)، از هفت ایستگاه در رودخانه های بابلرود و خرون و به صورت ماهانه انجام پذیرفت. پاراسنجه های مورد مطالعه عبارت بودند از: اسیدیته، هدایت الکتریکی، درجه حرارت، کل مواد جامد معلق، اکسیژن محلول، اکسیژن مورد نیاز شیمیایی، نیتریت، نیترات، فسفات، کلرید، یون سولفات و کلیفرم مدفوعی و برخی از فلزات سنگین، شامل کبالت، سرب، منگنز، روی، آهن، کروم و نیکل که به صورت فصلی مورد اندازه گیری قرار گرفتند. داده های حاصل از آزمایش با استفاده از شاخص کیفی BCWQI تجزیه و تحلیل گردید. براساس شاخص BCWQI، کیفیت کلی آب رودخانه در تمام ایستگاههای مورد مطالعه برای آبزیان و پرورش ماهی ضعیف ولی جهت مصارف کشاورزی، متوسط ارزیابی گردید. به طوری که از نظر pH، درجه حرارت و املاح محلول مساعد بوده ولی از نظر اکسیژن محلول جهت آبزیان در حد نامساعد ارزیابی گردید. هم چنین به علت کدورت آب در 2 رودخانه و تقریباً تمام طول دوره مطالعه ضمن اثر منفی بر فتوسنتز در جوامع آبزیان، باعث افزایش استرس می شود. درخصوص املاح محلول عمدتاً در محدوده قابل قبول قرار داشتند. فلزات سنگین نیز تقریباً در تمام ایستگاه ها بیش از حد مجاز وجود داشته اند که شرایط نامناسب را از نظر سلامتی ایجاد می کند. در چنین شرایطی لازم است تا کارهای پیشگرانه و احتیاطی جهت حفظ اکوسیستم در نظر گرفته شود.
http://www.aejournal.ir/article_104232_45600913c3c3027369401d5c4109a163.pdf
2020-03-20
393
400
10.22034/aej.2020.104232
بابلرود
خرون
BCWQI
فلزات سنگین
اکوسیستم
آبزیان
علی
بهمنش
ali.behmanesh@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، واحد قائمشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، قائمشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
اسحقی تیموری، م.؛ پاتیمار، ر.؛ نادری جلودار، م.؛ جعفریان، ح.ا. و قربان نصرآبادی، ر.، 1392. ارزیابی کیفیت آب رودخانه بابلرود با استفاده از شاخص های زیستی. همایش ملی علوم جانوران آبزی. دانشگاه گیلان. رشت.
1
باقری، س.؛ قربانی، ر.؛ فضلی، ح. و ماهینی، ع.، ۱۳۹۲. بررسی وضعیت کیفی رودخانه مهم مازندران با استفاده از شاخص NSFWQI. کنفرانس ملی مدیریت سیلاب، تهران.
2
رحمانی, ع.ر.، ۱۳۸۶، تعیین کیفیت آب رودخانه های جاری در دشت همدان- بهار بر مبنای روش طبقه بندی ویلکوکس. دهمین همایش ملی بهداشت محیط. همدان، دانشگاه علوم پزشکی همدان.
3
رمضانی، م.؛ امیرنژاد، ر. و اصغرنیا، ح.، 1391. بررسی کیفی رودخانه تالار قائم شهر براساس شاخص .NSFWQI اکوبیولوژی تالاب، دوره 4، شماره 14، صفحات 31 تا 43.
4
ززولی، م.ع.؛ برافراشته پور، م.؛ برافراشته پور، ز. و قلندری، و.، 1392. تغییرات زمانی و مکانی غلظت نیترات و نیتریت منابع آب آشامیدنی شهرستان کهگیلویه با استفاده از سیستم اطلاعات جغرافیایی (GIS). مجله دانشگاه علوم پزشکی و خدمات بهداشتی درمانی مازندران. جلد ۲3، شماره 109، صفحات 258 تا 263.
5
ززولی، م.ع. و علم قلیلو، م.، 1391. بررسی کیفیت شیمیایی (نیترات، فلوراید، سختی و هدایت الکتریکی) آب آشامیدنی شهرستان خوی. مجله دانشگاه علوم پزشکی و خدمات بهداشتی درمانی مازندران. جلد ۲۲، شماره ۲، صفحات ۸۰ تا ۸۴.
6
سلگی، ع. و شیخ زاده، ح.، 1395. مطالعه کیفیت آب رودخانه ارس با استفاده از متغیرهای فیزیکی-شیمیایی. مجله تحقیقات منابع آب ایران. سال 12، شماره 3، صفحات 207 تا 213.
7
صمدی, م.ت.؛ ساقی، م.ح.؛ رحمانی، ع.ر. و تراب زاده، ح.، 1388. پهنه بندی کیفی آب رودخانه دره مرادبیک همدان براساس شاخص کیفی آب با بهره گیری از سامانه اطلاعات جغرافیایی (GIS). دوازدهمین همایش ملی بهداشت محیط. تهران، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی.
8
غفاری، ک.، 1383. پهنه بندی خطر سیل با استفاده از سیستم اطلاعات جغرافیایی GIS، مطالعه موردی رودخانه بابلرود، پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه مازندران.
9
فرزادکیا، م.؛ ناصری، س.؛ رضایی کلانتری، ر.؛ اصغرنیا، ح.؛ گوهری، م.ر.؛ اسرافیلی، ع.؛ دادبان شهامت، ی. و قنبری، ن.، 1394. پهنه بندی کیفی آب رودخانه بابلرود بر مبنای شاخص کیفی NSFWQI و نرم افزار .GIS مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. دوره 25، شماره 134، صفحات 357 تا 362.
10
محسنی بندپی. ا.؛ مجلسی، م. و کاظم پور، ع.، ۱۳۹۲. بررسی کیفیت آب رودخانه گل گل ایلام براساس شاخص کیفی آب NSFWQI. فصلنامه بهداشت در عرصه. جلد 1 ، شماره 4، صفحات 45 تا 53.
11
مفتاح هلقی، م.،1390. پهنه بندی کیفی آب با استفاده از شاخص های متفاوت کیفی مطالعه موردی: رودخانه اترک. مجله پژوهش های حفاظت آب و خاک. دوره 18، شماره 2، صفحات 211 تا 220.
12
مهاب قدس. 1381. مطالعات ارزیابی اثرات زیست محیطی طرح البرز، جلد اول، شرایط موجود زیست محیطی، شرکت سهامی آب منطقه ای مازندان و گلستان.
13
میرزایی، م.؛ ریاحی بختیاری، ع.ر.؛ سلمان ماهینی، ع. و غلامعلی فرد، م.،1392. آنالیز کیفیت فیزیکی و شیمیایی آب رودخانههای استان مازندران با استفاده از روشهای چند متغیره آماری. مجله دانشگاه علوم پزشکی و خدمات بهداشتی درمانی مازندران. جلد ۲۳، شماره ۱۰۸، صفحات ۴۱ تا ۵۲ .
14
نوربخش، س.ج.؛ پوراصغر، م.؛ قنبری، ن.ا. و یدالهی، ع.ا.، ۱۳۸۷. بررسی وضعیت کیفی شش رود خانه مازندران با استفاده از شاخص NSFWQI. دومین همایش تخصصی مهندسی محیط زیست. تهران، دانشگاه تهران، دانشکده محیط زیست.
15
APHA. 2003. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater, American Public Health, Association, Washington DC, USA.
16
BCWQI. 1996. Ministry of Environment, Lands, and Parks: The Water Quality Section. British Columbia Water Quality Status Report. Victoria, BC. 179 p.
17
Gatot, E.S.S., 2011. Proposing Water Quality Index Calculation Method for Indonesian Water Quality Monitoring Program. International Journal of Engineering and Science. Vol. 2, No. 2, pp: 47-52.
18
Humpesch, U.H. and Fesl, C., 2002. The effect of river bed management on the habitat structure and Macro invertebrate’s community of a ninth order river, in Austria. Archir fur Hydrobiology Large Rivers. Vol. 13, No. 1, pp: 29-46.
19
Khorbane, S.; Gohari, S. and Banedah, H., 2013. Determination of water quality indices for choosing the most suitable indicator in unity dam. Eleventh General Irrigation Seminar and Evaporation Reduction. Kerman [In Persian].
20
Stickney, R.R., 2000. Encyclopedia of aquaculture. John Wiley and Sons, Inc. 1063 P.
21
WWTP Online. Available at: URL:http://ts.tpww.co.ir/ pfazelab-pf2-fa.html [verified at 25 Jun. 2014].
22
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی میزان رشد و پروفایل اسیدهای چرب ریزجلبک Chlorella vulgaris در محیط کشت حاوی فاضلاب شهری
این تحقیق به منظور تعیین محتوای اسیدهای چرب در ریزجلبک Chlorella vulgaris کشت شده در تیمارهای مختلف فاضلاب شهری انجام گردید. چهار تیمار (هر تیمار با 3 تکرار) با درصدهای مختلف فاضلاب شهری و محیط کشت f/2 تهیه و در شرایط آزمایشگاهی نگه داری شدند. جداسازی ریزجلبک در مراحل مختلف آزمایش با استفاده از دستگاه سانتریفوژ انجام گردید. میزان رشد و اسیدهای چرب در همه تیمارها اندازه گیری شد. نتایج نشان داد که طی دوره کشت، تیمارهای 1 و 4 بیش ترین رشد را داشتند. بین همه تیمارها بیش ترین مقدار اسیدهای چرب اشباع مربوط به C17:0 (هپتادکانوئیک اسید) و C6:0 (هگزانوئیک اسید) بود و هم چنین بیش ترین مقدار اسیدهای چرب غیراشباع با یک پیوند دوگانه مربوط به C16:1 (پالمیتولئیک اسید) و C18:1Cis9 (اولئیک اسید) بود. از نظر مقادیر اسیدهای چرب غیراشباع تک پیوندی (MUFA) و چندپیوندی (PUFA) بین تیمارها اختلاف معنی دار مشاهده شد (0/05>p). نتایج آنالیز واریانس یک طرفه (One-Way ANOVA) در تاثیر محیط های کشت بر مقادیر اسید چرب امگا 3 و 6 تفاوت معنی داری را بین تیمارها نشان داد (0/05>p). بیش ترین مقدار مربوط به اسید چرب امگا 3 در تیمار 2 (18/28 درصد) بود، درصورتی که در سایر تیمارها مقدار این اسید کم تر از 2 درصد ثبت گردید. بیش ترین مقدار امگا 6 هم در تیمار 2 و 4 با مقدار تقریبی 12 درصد اندازه گیری شد. براساس نتایج تحقیق حاضر پیشنهاد می شود که از فاضلاب به عنوان محیط کشت جایگزین برای تکثیر و پرورش انبوه ریزجلبک Chlorella vulgaris به عنوان منبعی غنی از امگا 3 استفاده شود.
http://www.aejournal.ir/article_105648_4ca04ea01290ab0ce3c2196c4023c1d1.pdf
2020-03-20
401
408
10.22034/aej.2020.105648
Chlorella Vulgaris
فاضلاب شهری
رشد
امگا3 و 6
اسید چرب
جواد
قاسم زاده
jghasemz@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
LEAD_AUTHOR
فاطمه
لواجوبلگوری
2
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
منصور
برازپور
3
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
AUTHOR
باقری، ش. و معصومی زاده، س.ز.، 1395. بررسی رشد میکروجلبک Chlorella sp. در آب دریا و فاضلاب غیراستریل. مجله علمی شیلات ایران. شماره 26، جلد 2، صفحات 153 تا 163.
1
گرجی، ه.؛ دوست شناس، ب.؛ سخایی زاده، ن. ؛ غانمی، ک. و ارچنگی، ب.، 1396. بررسی پروفایل اسیدهای چرب ریزجلبک های Spirulina sp. sp. ، Chlorella sp. Chaetoceros و معرفی آن ها به عنوان منابع بالقوه جدید جهت استخراج 6 و امگا 3 امگا. دوماهنامه طبّ جنوب. دوره 19، شماره 2، صفحات 212 تا 224.
2
Banerjee, S.; Hew, W.E.; Shariff, M. and Yusoff, F.M., 2011.Growth and proximate composition of tropical marine Chaetoceros calcitrans and Nannochloropsis oculata cultured outdoors and under laboratory conditions. African. Journal of Biotechnology. Vol. 10, pp: 1375-1383.
3
Becker, E.W., 1994. Microalgae: Biotechnology and Microbiology. (New York)
4
Bowen, R.A. and Clandinin, M.T., 2010. Maternal dietary 22:6n-3 is more effective than 18:3n-3 in increasing content in phospholipids of glial dietary protein sources and risk of coronary heart disease in women. Circulation. Vol. 122, pp 876-883.
5
Changfu, W.; Xiaoqing, Y.; Hong, L. and Jun, Y., 2013. Nitrogen and phosphorus removal from municipal wastewater by the green alga Chlorella sp. Journal of Environmental Biology. Vol. 34, pp 421-425.
6
Chattip, P.; Prasert, P.; Armando, T.Q.; Montomobu, G. and Artiwan, S., 2012. Microalgae lipid extraction and evaluation of single step biodiesel production. Engineering Journal. Vol. 16, 5 p.
7
Cho, S.; Lee, N. and Park, S., 2013. Micoalgae cultivation for bioenergy production using wastewaters from mamunicipal waste water treatment plant, as nutritional sources. Bioresour. Technol. Vol. 131, pp: 515-520.
8
Cho, D.H.; Ramanan, R.; Heo, J.; kang, Z.; Kim, B.H.; Ahn, C.Y.; Oh, H.N. and Kim, H.S., 2015. Organic carbon, influent microbial diversity and temperature strongly influence algal diversity and biomass in raceway ponds treating raw municipal wastewater. Bioresour. Technol. Vol. 191, pp: 481-487. doi: 10.1016/j.biortech.2015.02.013.
9
Das, S.K.; Khan, M.M.R.; Guha, A.K.; Das, A.R. and Mandal, A.B., 2012. Silver-nano biohybride material: synthesis, characterization and application in water purification. Bioresource Technology. Vol. 124,pp 495-499.
10
Dieffnbacher, A. and Pocklington, W., 1992. Standard Methods for the Analysis of Oils, Fats and Derivatives 1St Supplement. 7th Revised and Enlarged Edition. Blackwell Scientific Oxford. Vol. 1, 171 p.
11
Farooq, A.; Aminu, K. and Abdullah, Y., 2013. The potential of Chlorella vulgaris for wastewater treatment and biodiesel production. Pakistan Journal of Botany. Vol. 45, pp: 461-465.
12
Folch, A.; Ayon, A.; Hurtado, O.M.A.; Schmidt, M.A. and Tone, H., 1999. Molding of deep polydimethylsiloxane microstructures for microfluidics and biological applications. Journal of Biomechanical Engineering. Vol. 121, pp: 28-34.
13
Galli, C. and Marangoni, F., 2006. N-3 fatty acids in the Mediterranean diet. Prostaglandins Leukotrienes and Essential Fatty Acids. Vol. 75, pp: 129-33.
14
Goli, S.A.H.; Sahafi, S.M.; Rashidi, B. and Rahimmalek, M., 2013. Novel oilseed of Dracocephalum kotschyi with high n3 to n6 polyunsaturated fatty acid ratio. Industrial Crops and Products. Vol. 43, pp: 188-193.
15
Gorjizadeh, H.; Sakhaei, N.; Doustshenas, B.; Ghanemi, K. and Archangi, B., 2016. Fatty acid composition of Spirulina sp., Chlorella sp. and Chaetoceros sp. Microalgae and introduction as potential new sources to extinct omega 3 and omega 6. Iran South Medical Journal. Vol. 19, No. 2, pp: 212-224.
16
He, P.J.; Mao, B. and Shen, C.M., 2013. Cultivation of Chlorella vulgaris on waste water containing high level of ammonia for biodiesel production. Bioresour. Technol. Vol. 129, pp: 177-181.
17
Hu, Q.; Sommerfeld, M.; Jarvis, E. and Ghirardi, M., 2008. Microalgal triacylglycerols as feed stocks for biofuel productions: perspectives and advances. Blackwell Publishing Ltd, National Renewable Energy Laboratory. Plant. Vol. 5, pp: 621-639.
18
Kshirsagar, A.D., 2013. Bioremediation of wastewater by using microalgae: an experimental study. International Journal of Life Science Biotechnology and Pharmacology Research. Vol. 2, No. 3, pp: 339-346.
19
Kachroo, D.; Singh, J.S.M. and Ramamurthy, V., 2006. Modulation of unsaturated fatty acids content in algae Spirulina platensis and Chlorella minutissima in response to herbicide SAN 9785. Elect J Biotech. Vol. 9, pp: 386-390.
20
Lavajoo, F.; Amrollahi Biuki, F.; Khanipour, A.; Mirzajani, A. and Akbarzadeh, A., 2018. An Invasive Shrimp Species, Machrobrachium nipponense, in Anzali Wetland Demonstrated a Potential Source for Commercial Fishing, Journal of Aquatic Food Product Technology. Vol. 27, No. 9, pp: 975-985.
21
Lavajoo, F. and Taherizadeh, M., 2016. Determination of the growth rates of Spirolina and Chaeatoceros algae in urban waste sewage and their capability to deplete nitrate and phosphate content in the sewage. Journal of Applied Sciences & Environmental Management. Vol. 20, No. 3, pp: 691-699.
22
Leonardos, N. and Geider, R.J., 2004. Responses of elemental and biochemical composition of Chaetoceros muelleri to growth under varying light and nitrate: phosphate supply ratios and their influence on critical N:P. Limnol. Oceanogr. Vol. 49, pp: 2105-2114.
23
Li, X.; Hu, H.Y. and Yang, J., 2010. Lipid accumulation and nutrient removal properties of a newly isolated freshwater microalga, Scenedesmus sp. LX1, growing in secondary effluent. New Biotechnology. Vol. 27, No. 1, pp: 59-63.
24
Mahmut, O. and Sengil, I.A., 2003. Enhancing phosphate removal from wastewater by using polyelectrolytes and clay injection. Journal of Hazardous Material. Vol. 100, No. 1-3, pp: 131-146.
25
Mandalam, R.K. and Palsson, B., 1998. Elemental balancing of biomass and medium composition enhances growth capacity in high-density Chlorella vulgaris culture. Biotechnol. Bioeng. Vol. 59, pp: 605-611.
26
Merzlyak, M.N.; Chivkunova, O.B.; Gorelova, O.A. and Reshetnikova, V., 2007. Effect of nitrogen starvation on optical properties, pigments, and arachidonic acid content of the unicellular green alga Parietochloris incisa (Trebouxiophyceae, Chlorophyta). Journal of Phycology. Vol. 43, No. 4, pp: 833-843.
27
Myers, J.A.; Curtis, B.S. and Curtis, W.R., 2013. Improving accuracy of cell and chromophore concentration measurements using optical density. BMC Biophysics. Vol. 6, 4 p.
28
Otles, S. and Pire, R., 2001. Fatty acid composition of Chlorella and Spirulina microalgae species. J AOAC. Vol. 84, pp: 1708-1714.
29
Rocha, J.M.S.; Garcia, J.E.C. and Henriques, M.H.F., 2003. Growth aspects of the marine microalga Nannochloropsis gaditana. Biomolecular engineering. Vol. 20, pp: 237-242.
30
Sayadi, M.H.; Ghatnekar, S.D. and Kavian, M.F., 2011. Algae a promising alternative for biofuel. Proceedings of the International Academy of Ecology and Environmental Sciences. Vol. 1, No. 2, 112 p.
31
Salgueiro, J.L.; Perez, L.; Maceiras, R.; Sanchez, A. and Cancela, A., 2016. Bioremediation of wastewater using Chlorella vulgaris microalgae: phosphorus and organic matter. Int. J. Environ. Res. Vol. 10, No. 3, pp: 465-470.
32
Tam, N.F.Y. and Wong, Y.S., 1994. Nutrient and heavy metal retention in mangrove sediment receiving wastewater. Water Science and Technology. Vol. 29, No. 4, pp: 193-200.
33
Tam, N.F.Y. and Wong, Y.S., 1996. Effect of ammonia concentrations on growth of Chlorella vulgaris and nitrogen removal from media. Bioresource Technology. Vol. 57, No. 1, pp: 45-50.
34
Voltolina, D.; Gmez-Villa, H. and Correa, G., 2004. Biomass production and nutrient removal in semicontinuous cultures of Scenedesmus sp. (Chlorophyceae) in artificial wastewater, under a simulated day-night cycle. Vie Milieu. Vol. 54, pp: 21-25.
35
Vasconcelos, V.M. and Pereira, E., 2001. Cyanobacteria diversity and toxicity in wastewater treatment plant (Portugal). Water Research. Vol. 35, pp: 1354-1357.
36
Voet, D.; Voet, J.G. and Pratt, C.W., 2006. Fundamentals of Biochemistry (2nd ed.). John Wiley & Sons. pp: 547-556.
37
Yalcin, T.; Naz, M. and Turkmen, M., 2006. Utilization of different nitrogen sources by cultures of Scenedesmus acuminatus. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 6, pp: 123-127.
38
Yang, J.; Rasa, E. and Tantayotai, P., 2011. Mathematical model of Chlorella minutissima UTEX2341 growth and lipid production under photoheterotrophic fermentation conditions. Bioresource Technol. Vol. 102, pp: 3077-3082.
39
Yoo, C.; Jun, S.Y. and Lee, J.Y., 2010. Selection of microalgae for lipid production under high levels carbon dioxide. Bioresource Technology. Vol. 101, pp: 71-74.
40
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی توان بیومس جلبک قهوه ای سارگاسوم Sargassum ilicifolium در جذب زیستی غلظت های مختلف یون نیترات
ورود بیش از اندازه یون نیترات از طریق فاضلاب های شهری و کشاورزی به منابع آبی سطحی و زیر سطحی سبب شکل گیری پدیده یوتریفیکاسیون و به دنبال آن بلوم جلبکی و کاهش اکسیژن محلول اکوسیستم های آبی می شود. این تغییرات، سبب بر هم خوردن تعادل زیستی در این زیست بوم ها و در نهایت مرگ و نابودی موجودات زنده آن ها می گردد. در حال حاضر، جاذب های متنوعی برای حذف و یا برداشت یون نیترات مازاد از محیط های آبی مورد استفاده قرار می گیرد. در مطالعه حاضر توان جلبک دریایی Sargassum ilicifolium به عنوان یک جاذب زیستی برای حذف یون نیترات مورد بررسی قرار گرفت. در این آزمایش دامنه متنوعی از تغییرات pH شامل (2، 3، 4، 5، 6، 7 و 8)، مقدار بیومس ابتدایی جلبک ( 0/01 ،0/03 ،0/05 ،0/1 ،0/15 ،0/2 ،0/3 ، 0/4 گرم) Sargassum ilicifolium و غلظت ابتدایی یون نیترات (50، 100، 150، 200، 250، 300 و 350 میلی گرم در لیتر) در زمان تماس (60-0 دقیقه) بر روند حذف و برداشت یون نیترات از محیط آبی مورد آزمون گرفت. نتایج حاصل از این آزمایش نشان داد که جلبک دریایی S. ilicifolium در مناسب ترین شرایط آزمایش دارای ظرفیت جذب نیترات به میزان 560 میلی گرم بر گرم و هم چنین درصد حذف نیترات 48% می باشد. مناسب ترین شرایط برای جذب نیترات در زمانی به دست آمد که مقدار بیوماس مصرفی جلبک 0/01 گرم در لیتر، 7:pH و غلظت اولیه نیترات 350 میلی گرم در لیتر تنظیم شد. به طورکلی نتایج به دست آمده از این تحقیق نشان داد که پودر خشک جلبک S. ilicifolium قابلیت مناسبی برای حذف یون نیترات از محیط های آبی داشته و جاذب زیستی مناسبی برای تصفیه فاضلاب های شهری و کشاورزی می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_105672_af08cd33dfcda800ab3406628b92aa47.pdf
2020-03-20
409
416
10.22034/aej.2020.105672
Sargassum ilicifolium
جلبک دریایی
نیترات
جاذب زیستی
الناز
عرفانی فر
elnaz_erfani@yahoo.com
1
مرکز تحقیقات شیلاتی آب های دور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، چابهار، ایران
LEAD_AUTHOR
زهرا
امینی خوئی
zamini.41@gmail.com
2
مرکز تحقیقات شیلاتی آب های دور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، چابهار، ایران
AUTHOR
آزگلی، ا.، 1384. روند تغییرات نیترات در آبخوان منطقه یک شهرها و شهرک های غرب تهران. فصلنامه آب و محیط زیست. شماره 62، صفحات 35 تا 41.
1
بدیعی نژاد، ا.؛ غلامی، م.؛ جنیدی جعفری، ا. و عامری، ا.، 1391. بررسی عوامل موثر بر غلظت نیترات منابع آب شرب زیرزمینی شیراز با استفاده از سیستم اطلاعات جغرافیایی .(GIS) نشریه طلوع بهداشت. دوره 11، شماره 2، صفحات 47 تا 56.
2
حافظیه، م.؛ مرادی، ی.؛ پورکاظمی، م.؛ دادگر، ش. و شریفیان، م.، 1395. ترکیبات تقریبی- شیمیایی گیاه دریایی سارگاسوم مناطق مختلف ساحلی استان سیستان و بلوچستان. مجله علمی شیلات ایران. شماره 4، صفحات 29 تا 40.
3
قانعیان، م.ت.؛ غنی زاده، ق.؛ غلامی، م. و قادری نسب، ف.، 1388. جذب رنگ رادیواکتیو قرمز 123 با پوسته تخم مرغ. نشریه طبیب شرق. دوره 11، شماره 4، صفحات 25 تا 34.
4
قرنجیک، ب.؛ اژدری، د.؛ آذینی، م.؛ امینی راد، ت. و بلوچ، گ.، 1391. ارزیابی ذخایر گونه های اقتصادی گیاهان دریایی سواحل دریای عمان- استان سیستان و بلوچستان. گزارش نهایی پروژه تحقیقاتی موسسه تحقیقات شیلات ایران. 159 صفحه.
5
موحدیان، ح. و قنبرزاده، ش.، 1382. مقایسه نیترات و کربن آلی در منابع و شبکه توزیع آب آشامیدنی شهر اصفهان. مجموعه مقالات ششمین همایش کشوری بهداشت محیط. جلد 1. صفحات 7 تا 12.
6
Bhat, S.V.; Melo, J.S.; Chaugule, B.B. and D'souza, S.F., 2008. Biosorption characteristics of uranium (VI) from aqueous medium onto Catenella repens, a red alga. Journal of Hazardous Materials. Vol. 30, No. 2-3, pp: 28-35.
7
Craggs, R.J.; McAuley, P.J. and Smith, V.J., 1997. Wastewater nutrient removal by marine microalgae grown on a corrugated raceway. Water Res. Vol. 31. pp: 1701-1707.
8
Darbi, A.; Viraraghavan, T. and Butler, R., 2002. Corkal D. Batch studies on nitrate removal from potable water. Water Sa. Vol. 28, No. 3, pp: 19-22.
9
Doria, E.; Longoni, P.; Scibilia, L.; Iazzi, N. and Cella, R., 2012. Isolation and characterization of a Scenedesmus acutus strain to be used for bioremediation of urban wastewater. Journal of applied phycology. Vol. 1, No. 3, pp: 375-383.
10
Drizo, A.; Forget, C.; Chapuis, R.P. and Comeau, Y., 2006. Phosphorus removal by electric arc furnace steel slag and serpentinite. Water Research. Vol. 40, No. 8, pp: 1547-1554.
11
Ge, S.; Madill, M. and Champagne, P. 2018. Use of freshwater macroalgae Spirogyra sp. for the treatment of municipal wastewaters and biomass production for biofuel applications. Biomass and Bioenergy. Vol. 111, pp: 213-223.
12
Gong, R.; Ding, Y.; Liu, H.; Chen, Q. and Liu, Z., 2005. Lead biosorption and desorption by intact and pretreated Spirulina maxima biomass. Chemosphere. Vol. 58, No. 1, pp: 125-130.
13
Hamdy, AA., 2000. Biosorption of heavy metals by marine algae. Current Microbiology. Vol. 41, No. 4, pp: 232-238.
14
Hayashi, L.; Yokoya, N.S.; Ostini, S.; Pereira, R.T.; Braga, E.S. and Oliveira, E.C., 2008. Nutrients removed by Kappaphycus alvarezii (Rhodophyta, Solieriaceae) in integrated cultivation with fishes in re-circulating water. Aquaculture. Vol. 277, No. 3-4, pp: 185-191.
15
Jianyao, C.; Makoto, T. and Guanqun, L., 2007. Nitrate pollution of groundwater in the Yellow River delta, China. Hydrogeology Journal. Vol. 15, pp: 1605-1614.
16
Kang, C.D.; An, J.Y.; Park, T.H. and Sim, S.J., 2006. Astaxanthin biosynthesis from simultaneous N and P uptake by the green alga Haematococcus pluvialis in primary-treated wastewater. Biochemical Engineering Journal. Vol. 31, No. 3, pp: 234-238.
17
Liessens, J.; Germonpré, R.; Beernaert, S. and Verstraete, W., 1993. Removing nitrate with a methylotrophic fluidized bed: technology and operating performance. Journal‐American Water Works Association. Vol. 85, No. 4, pp: 144-154.
18
Mehta, S.K. and Gaur, J.P., 2005. Use of algae for removing heavy metal ions from wastewater: progress and prospects. Critical reviews in biotechnology. Vol. 25, No. 3, pp: 113-152.
19
Mithra, R.; Sivaramakrishnan, S.; Santhanam, P.; Dinesh Kumar, S. and Nandakumar, R., 2012. Investigation on nutrients and heavy metal removal efficacy of seaweeds, Caulerpa taxifolia and Kappaphycus alvarezii for wastewater remediation. Journal of Algal Biomass Utilization. Vol. 3, No. 1, pp: 21-27.
20
Mohseni, B. and Elliott, D.J., 1998. Ground water denitrification with alternative carbon sources. Water Science and Technology. Vol. 38, No. 6, pp: 237-243.
21
Naddafi, K. and Nabizadeh Nodehi, R., 2011. Removal of reactive blue 29 dye from water by single-wall carbon nanotubes. Iranian journal of health and environment. Vol. 15, No. 4. pp: 359-368.
22
Ngomsik, A.F.; Bee, A.; Talbot, D. and Cote, G., 2012. Magnetic solid–liquid extraction of Eu (III), La (III), Ni (II) and Co (II) with maghemite nanoparticles. Separation and purification technology. Vol. 15, No. 86, pp: 1-8.
23
Reddad, Z.; Gerente, C.; Andres, Y.; Le, M. and Cloirec, P., 2002. Adsorption of several metal ions onto a low-cost biosorbent: kinetic and equilibrium studies. Environmental science & technology. Vol. 36, No. 9, pp: 2067-2073.
24
Ren, M. and Ogden, K., 2014. Cultivation of Nannochloropsis gaditana on mixtures of nitrogen sources. Environmental Progress & Sustainable Energy. Vol. 33, No. 2. pp: 551-555.
25
Roy, D.; Greenlaw, P.N. and Shane, B.S., 1993. Adsorption of heavy metals by green algae and ground rice hulls. Journal of Environmental Science & Health Part A. Vol. 28, No. 1, pp: 37-50.
26
Sabeti, M.B.; Hejazi, M.A. and Karimi, A., 2018. Enhanced removal of nitrate and phosphate from wastewater by Chlorella vulgaris: Multi-objective optimization and CFD simulation. Chinese Journal of Chemical Engineering. Vol. 25. pp: 117-125.
27
Stuart, M.A.; Rich, F.J. and Bishop, G.A., 1995. Survey of nitrate contamination in shallow domestic drinking water wells of the inner coastal plain of Georgia. Groundwater. Vol. 33, No. 2, pp: 284-290.
28
Soumya, G.N.; Manickavasagam, M.; Santhanam, P.; Kumar, S.D. and Prabhavathi, P., 2015. Removal of phosphate and nitrate from aqueous solution using seagrass Cymodocea rotundata beads. African Journal of Biotechnology. Vol. 14, No. 16, pp: 1393-1400.
29
Wang, J. and Chen, C., 2009. Biosorbents for heavy metals removal and their future. Biotechnology advances. Vol. 27, No. 2, pp: 195-226.
30
Wang, B. and Lan, C.Q., 2011. Biomass production and nitrogen and phosphorus removal by the green alga Neochloris oleoabundans in simulated wastewater and secondary municipal wastewater effluent. Bioresource Technology. Vol. 102, No. 10, pp: 5639-5644.
31
WHO. 2003. Guide lines for drinking water quality. 2th ed. Geneva.
32
Zhou, W.; Sun, Y.; Wu, B.; Zhang, Y., Huang, M.; Miyanaga, T. and Zhang, Z., 2011. Autotrophic denitrification for nitrate and nitrite removal using sulfur limestone. Journal of Environmental Sciences. Vol. 23, No. 11. pp: 1761-1769.
33
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی اثر تغییر اقلیم بر ریسک تهاجم زیستی کهور آمریکایی در اکوسیستم های طبیعی ایران
کهور آمریکایی (Prosopis juliflora) یکی از مسئله دارترین گونه های مهاجم در سطح دنیا بوده و تهاجم زیستی این گونه آثار زیان بار متعددی بر اکوسیستم های طبیعی مناطق نیمه حاره ای تا خشک کره زمین وارد آورده است. این گونه در ابتدا در بسیاری از مناطق کره زمین با هدف مهندسی اکوسیستم از جمله حفاظت آب و خاک و مبارزه با بیابان زایی در مناطق گرم و خشک، و تولید چوب معرفی گردید. اما قابلیت تکثیر و انتشار بالا و نیز دامنه تحمل محیطی زیاد کهور آمریکایی منجر گسترش بیش از حد گونه، کاهش تنوع زیستی بومی و تغییر ساختار جوامع گیاهی در مناطق هدف بوده است. از آن جا که ریشه کن سازی گونه های مهاجم امری پرهزینه و زمان بر است، شناسایی مناطقی که در آینده پتانسیل بالایی برای حضور این گونه خصوصاً در اثر تغییر اقلیم دارند ابزاری پیشگیرانه جهت طرح ریزی و مدیریت اکوسیستم های هدف است. بدین منظور در پژوهش حاضر با استفاده از مدل سازی پراکنش بیشینه بینظمی (MaxEnt) و براساس مدل ها و سناریوهای متفاوت اقلیمی اثر تغییر اقلیم بر پراکنش گونه در مقیاس جهانی و کشوری مورد ارزیابی قرار گرفت. نتایج نشان داد که تا سال 2050 میلادی در تمام سناریوهای تغییر اقلیم بر گستره پراکنش گونه در عرض های جغرافیایی بالاتر افزوده خواهد شد. در سطح جهانی آمریکای شمالی، حوزه مدیترانه و خاورمیانه، و در سطح کشوری علاوه بر استان های جنوبی، زیستگاه های داخلی فلات ایران شامل استان های خراسان جنوبی، کرمان، فارس، سمنان و خراسان رضوی شاهد بیش ترین احتمال گسترش پراکنش گونه خواهند بود. بدین ترتیب نتایج پژوهش حاضر می تواند به عنوان ابزاری کارامد جهت طرح ریزی اقدامات پیشگیرانه و کاهش آثار منفی کهور آمریکایی در مناطق پرخطر مورد توجه قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_104223_3e898d0a4e450e6f7f3023e840a4152b.pdf
2020-03-20
417
426
10.22034/aej.2020.104223
مدل سازی پراکنش
تهاجم زیستی
تغییر اقلیم
کهور آمریکایی
تخریب اکوسیستم
ایرج
حشمتی
ir_heshmati@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
نعمت اله
خراسانی
khorasan@ut.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
بهمن
شمس اسفندآباد
b-shams@iau-arak.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
AUTHOR
برهان
ریاضی
briazi@pmz.ir
4
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
کریمیان، ع.ا.، 1379. تاثیرات آللوپاتیک کهور آمریکائی. دانشکده منابع طبیعی و کویرشناسی دانشگاه یزد.
1
نجفی تیره شبانکاره، ک.، 1379. جمع بندی اجمالی از قابلیت ها و محدودیت های کاشت گونه کهور آمریکایی در سواحل جنوب کشور، گزارش داخلی مرکز تحقیقات منابع طبیعی هرمزگان. 73 صفحه.
2
Ahmadi, M.; Hemami, M.R.; Kaboli, M.; Malekian, M. and Zimmermann, N.E., 2019. Extinction risks of a Mediterranean neo-endemism complex of mountain vipers triggered by climate change. Scientific reports. Vol. 9, No. 1, pp: 6332.
3
Araújo, M.B.; Rozenfeld, A.; Rahbek, C. and Marquet, P.A., 2011. Using species co‐occurrence networks to assess the impacts of climate change. Ecography. Vol. 34, No. 6. pp: 897-908.
4
Albouy, C.; Guilhaumon, F.; Araújo, M. B.; Mouillot, D. and Leprieur, F., 2012. Combining projected changes in species richness and composition reveals climate change impacts on coastal Mediterranean fish assemblages. Global Change Biology. Vol. 18, No. 10, pp: 2995-3003.
5
Ayanu, Y.; Jentsch, A.; Müller-Mahn, D.; Rettberg, S.; Romankiewicz, C. and Koellner, T., 2015. Ecosystem engineer unleashed: Prosopis juliflora threatening ecosystem services? Regional Environmental Change. Vol. 15, No. 1, pp: 155-167.
6
Broennimann, O. and Guisan, A., 2008. Predicting current and future biological invasions: both native and invaded ranges matter. Biology letters. Vol. 4, No. 5, pp: 585-589.
7
Davidson, A.M.; Jennions, M. and Nicotra, A.B., 2011. Do invasive species show higher phenotypic plasticity than native species and, if so, is it adaptive? A meta‐analysis. Ecology Letters. Vol. 14, No. 4, pp: 419-431.
8
Dormann, C.F.; McPherson, J.M.; Araújo, M.B.; Bivand, R.; Bolliger, J.; Carl, G.; Davies, R.G.; Hirzel, A.; Jetz, W. and Kissling, W.D., 2007. Methods to account for spatial autocorrelation in the analysis of species distributional data: a review. Ecography. Vol. 30, No. 5, pp: 609-628.
9
Early, R. and Sax, D.F., 2014. Climatic niche shifts between species' native and naturalized ranges raise concern for ecological forecasts during invasions and climate change. Global Ecology and Biogeography. Vol. 23, No. 12, pp: 1356-1365.
10
Ehrenfeld, J.G., 2010. Ecosystem consequences of biological invasions. Annual review of ecology, evolution, and systematics. Vol. 41, pp: 59-80.
11
Elith, J.; Kearney, M. and Phillips, S., 2010. The art of modelling range‐shifting species. Methods in ecology and evolution. Vol. 1, No. 4, pp: 330-342.
12
El-Keblawy, A. and Al-Rawai, A., 2007. Impacts of the invasive exotic Prosopis juliflora (Sw.) DC on the native flora and soils of the UAE. Plant Ecology. Vol. 190, No. 1, pp: 23-35.
13
Evangelista, P.H.; Kumar, S.; Stohlgren, T.J.; Jarnevich, C.S.; Crall, A.W.; Norman III, J.B. and Barnett, D.T., 2008. Modelling invasion for a habitat generalist and a specialist plant species. Diversity and distributions. Vol. 14, No. 5, pp: 808-817.
14
Fernandes, R.F.; Vicente, J.R.; Georges, D.; Alves, P.; Thuiller, W. and Honrado, J.P., 2014. A novel downscaling approach to predict plant invasions and improve local conservation actions. Biological Invasions. Vol. 16, No. 12, pp: 2577-2590.
15
Ficetola, G.F.; Thuiller, W. and Miaud, C., 2007. Prediction and validation of the potential global distribution of a problematic alien invasive species, the American bullfrog. Diversity and Distributions. Vol. 13, No. 4, pp: 476-485.
16
Franklin, J., 2010. Mapping species distributions: spatial inference and prediction. Cambridge University Press.
17
Genovesi, P., 2005. Eradications of invasive alien species in Europe: a review. Biological invasions. Vol. 7, No. 1, pp: 127-133.
18
Guisan, A.; Thuiller, W. and Zimmermann, N., E.2017. Habitat Suitability and Distribution Models: With Applications in R. Cambridge University Press.
19
Harsch, M.A.; Phillips, A.; Zhou, Y.; Leung, M.R.; Rinnan, D.S. and Kot, M., 2017. Moving forward: insights and applications of moving‐habitat models for climate change ecology. Journal of ecology. Vol. 105, No. 5, pp: 1169-1181.
20
Hellmann, J.J.; Byers, J.E.; Bierwagen, B.G. and Dukes, J.S., 2008. Five potential consequences of climate change for invasive species. Conservation Biology. Vol. 22, No. 3, pp: 534-543.
21
Hijmans, R.J.; Cameron, S.E.; Parra, J.L.; Jones, P.G. and Jarvis, A., 2005. Very high resolution interpolated climate surfaces for global land areas. International journal of climatology. Vol. 25, No. 15, pp: 1965-1978.
22
Kettunen, M.; Genovesi, P.; Gollasch, S.; Pagad, S.; Starfinger, U.; ten Brink, P. and Shine, C., 2009. Technical support to EU strategy on invasive alien species (IAS). Institute for European Environmental Policy (IEEP), Brussels. 44 p.
23
Kramer-Schadt, S.; Niedballa, J.; Pilgrim, J.D.; Schröder, B.; Lindenborn, J.; Reinfelder, V.; Stillfried, M.; Heckmann, I.; Scharf, A.K.; Augeri, D.M.; Cheyne, S.M.; Hearn, A.J.; Ross, J.; Macdonald, D.W.;Mathai, J.; Eaton, J.; Marshall, A.J.; Semiadi, G.; Rustam, R.; Bernard, H.; Alfred, R.; Samejima, H.; Duckworth, J.W.; Breitenmoser-Wuersten, C.; Belant, J.L.; Hofer, H. and Wilting, A., 2013. The importance of correcting for sampling bias in MaxEnt species distribution models. Diversity and distributions. Vol. 19, No. 11, pp: 1366-1379.
24
Kumar, S.; Neven, L.G.; Zhu, H. and Zhang, R., 2015b. Assessing the global risk of establishment of Cydia pomonella (Lepidoptera: Tortricidae) using CLIMEX and MaxEnt niche models. Journal of economic entomology. Vol. 108, No. 4, pp: 1708-1719.
25
Parmesan, C., 2006. Ecological and evolutionary responses to recent climate change. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics. Vol. 37, pp: 637-669.
26
Pasiecznik, N.M.; Felker, P.; Harris, P.J.; Harsh, L.; Cruz, G.; Tewari, J.; Cadoret, K. and Maldonado, L.J., 2001. Prosopis Juliflora'-'Prosopis Pallida'Complex: A Monograph. HDRA Coventry.
27
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological modelling. Vol. 190, No. 3-4, pp: 231-259.
28
Rejmanek, M.; Richardson, D.M.; Higgins, S.I.; Pitcairn, M.J. and Grotkopp, E., 2005. Ecology of invasive plants: state of the art. Invasive Alien Species: A New Synthesis H. A. Mooney; R. Mack; J. A. McNeely et al., Island Press, Washington, DC.pp:104-161.
29
Richardson, D.M. and Rejmánek, M., 2011. Trees and shrubs as invasive alien species, a global review. Diversity and distributions. Vol. 17, No. 5, pp: 788-809.
30
Rödder, D. and Lötters, S., 2009. Niche shift versus niche conservatism? Climatic characteristics of the native and invasive ranges of the Mediterranean house gecko (Hemidactylus turcicus). Global Ecology and Biogeography. Vol. 18, No. 6, pp: 674-687.
31
Scott, J. and Panetta, F., 1993. Predicting the Australian weed status of southern African plants. Journal of Biogeography. pp: 87-93.
32
Seipel, T.; Kueffer, C.; Rew, L.J.; Daehler, C.C.; Pauchard, A.; Naylor, B.J.; Alexander, J.M.; Edwards, P.J.; Parks, C.G. and Arevalo, J.R., 2012. Processes at multiple scales affect richness and similarity of non‐native plant species in mountains around the world. Global Ecology and Biogeography. Vol. 21, No. 2, pp: 236-246.
33
Thuiller, W.; Richardson, D.M.; Pyšek, P.; Midgley, G.F.; Hughes, G.O. and Rouget, M., 2005. Niche‐based modelling as a tool for predicting the risk of alien plant invasions at a global scale. Global change biology. Vol. 11, No. 12, pp: 2234-2250.
34
Tingley, R.; Vallinoto, M.; Sequeira, F. and Kearney, M., R. 2014. Realized niche shift during a global biological invasion. Proceedings of the National Academy of Sciences. Vol. 20, No. 140, pp: 57-66.
35
Vilà, M.; Espinar, J.L.; Hejda, M.; Hulme, P.E.; Jarošík, V.; Maron, J.L.; Pergl, J.; Schaffner, U.; Sun,Y. and Pyšek, P., 2011. Ecological impacts of invasive alien plants: a meta‐analysis of their effects on species, communities and ecosystems. Ecology letters. Vol. 14, No. 7, pp: 702-708.
36
Waltari, E. and Guralnick, R.P., 2009. Ecological niche modelling of montane mammals in the Great Basin, North America: examining past and present connectivity of species across basins and ranges. Journal of Biogeography. Vol. 36, No. 1, pp: 148-161.
37
Walther, G.R.; Roques, A.; Hulme, P.E.; Sykes, M.T.; Pyšek, P.; Kühn, I.; Zobel, M.; Bacher, S.; Botta-Dukat, Z. and Bugmann, H., 2009. Alien species in a warmer world: risks and opportunities. Trends in Ecology and Evolution. Vol. 24, No. 12, pp: 686-693.
38
Yousefi, M.; Ahmadi, M.; Nourani, E.; Behrooz, R.; Rajabizadeh, M.; Geniez, P. and Kaboli, M., 2015. Upward Altitudinal Shifts in Habitat Suitability of Mountain Vipers since the Last Glacial Maximum. PloS one. Vol. 10, No. 9, e0138087.
39
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی تاثیر شستشو، پوست گیری و نگه داری در یخچال بر کاهش میزان باقی مانده چهار آفت کش (دیازینون، ایمیداکلوپرید، پریمیکارب و استامی پراید) در خیار گلخانه ای (Cucumis sativus var:vista)
از آن جایی که باقی مانده آفت کش ها در محصولات خوراکی به طور بالقوه سمی هستند، یکی از نگرانی های بزرگ سلامتی محسوب می شوند. آن ها ممکن است اثرات نامطلوب مانند سرطان، اثرات بر تولیدمثل، عوارض سیستم ایمنی و عصبی درپی داشته باشند. یکی از اهداف مهم برنامه های مدیریتی، کاهش آلودگی ناشی از باقی مانده آفت کش ها در محیط و مواد غذایی است. آماده سازی غذا به شدت بر روی باقی مانده های آفت کش ها و ایمنی غذا تأثیر می گذارد. هدف از این مطالعه ارزیابی اثرات شستشو، پوست گیری و نگه داری در یخچال بر روی مواد باقی مانده از چهار سموم دفع آفات نمونه برداری محصول تحت اثر سموم دیازینون،ایمیداکلوپرید، پریمیکارب و استامی پراید در خیارهای گلخانه ای است. در این تحقیق ابتدا نمونه های خیار پس از اسپری برداشت شد و غلظت سم با استفاده از دستگاه کروماتوگرافی مایع با کارائی بالا مجهز به آشکار ساز فرابنفش و مرئی (HPLC-DAD) مورد سنجش قرار گرفت. در این بخش، فرآیندهای زیر مورد بررسی قرار گرفتند. شستشو با آب آشامیدنی: نمونه ها در آب آشامیدنی به مدت 10 دقیقه غوطه ور شده و دارای سایش 10 ثانیه بوده اند. عملیات ریختن: در قسمت دیگر، برای ارزیابی اثر لایه برداری با چاقو و تلاش برای حتی حذف ضخامت پوست گرفته شده برای همه نمونه ها از همان اندازه، عملیات ذخیره سازی در دمای 4 درجه سانتی گراد: در میزان کاهش سموم مربوطه. برای انجام این مرحله از مطالعه ابتدا 1 کیلوگرم نمونه بعد از برداشت به آزمایشگاه منتقل شد. در آزمایشگاه نمونه ها در نایلون پلاستیکی در یخچال قرار گرفتند و در دمای 4 درجه سانتی گراد نگه داری شدند. در روزهای 2 ،5 ،7 ،10 ،14، 17، 21 حدود یک چهارم کیلوگرم نمونه از یخچال خارج شد و استخراج سم بر روی آن ها انجام شد. درنهایت این نتیجه حاصل شد که روش های مورد بررسی به عنوان روش های ساده و موثر پردازش می تواند برای کاهش و حتی حذف آفت کش ها در محصولات گلخانه ای به عنوان تکنیک های پردازش خانگی یا تجاری استفاده شود. براین اساس، پوست گیری یکی از تکنیک های مهم با بیش ترین تاثیرگذاری در کاهش باقی مانده آفت کش ها در خیار گلخانه ای است (0/05>P). مقایسۀ میانگین میزان چهار مخلوط آفت کش ها تفاوت بین نمونه های پوست شده و بدون پوست معنی دار بود و روش شستشو در مقام دوم برای کاهش باقی مانده آفت کش ها است که تأثیر این روش بستگی به نوع آفت کش ها و مکان های تحت تاثیر قرار می گیرد. در نهایت این تحقیق بیانگر که انطباق این روش ها با (PHI (Per Interval Harvest خطرات باقی مانده آفت کش ها را کاهش می دهد.
http://www.aejournal.ir/article_105708_1166b50e165a10f2bd9b6c431818c4c9.pdf
2020-03-20
427
434
10.22034/aej.2020.105708
باقی مانده آفت کش
دیازینون
ایمیداکلوپرید
پریمیکارب
استامی پراید
کروماتوگرافی مایع با کارائی بالا
آناهیتا
یزدان پاک
yazdanpaka@yahoo.com
1
گروه حشره شناسی، دانشکده کشاورزی، واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی، شیراز، ایران
AUTHOR
هادی
استوان
ostovan2001@yahoo.com
2
گروه حشره شناسی، دانشکده کشاورزی، واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی، شیراز، ایران
LEAD_AUTHOR
شهرام
حسامی
shahram.hesami@gmail.com
3
گروه حشره شناسی، دانشکده کشاورزی، واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی، شیراز، ایران
AUTHOR
مهدی
غیبی
mehgheibi@yahoo.com
4
گروه حشره شناسی، دانشکده کشاورزی، واحد شیراز، دانشگاه آزاد اسلامی، شیراز، ایران
AUTHOR
ایمانی، س.؛ طالبی، خ.، شجاعی، م. و کمالی، ک.، 1385. اندازه گیری باقی مانده 8 سم آفت کش بر روی گوجه فرنگی و خیار سبز گلخانه ای. هفدهمین کنگره حفاظت از گیاهان ایران، تهران.
1
سلسه، م.، 1379. بررسی و تعیین مقدار حشره کش های مصرفی فسفره در آب رودخانه های استان مازندران. کارشناسی ارشد. تهران. دانشگاه علوم پزشکی تهران.
2
طالبی جهرمی،خ.، 1391. سم شناسی آفت کش ها. انتشارات دانشگاه تهران.
3
حسن زاده، ن.؛ بهرامی فر، ن. واسماعیلی ساری، ع.، 1389. بررسی بقایای حشره کش ایمیداکلوپرید در دوره کارنس 21 روزه و کاهش آن با روش های مختلف در خیار گلخانه ای. نشریه حفاظت گیاهان (علوم و صنایع کشاورزی). جلد 24، شماره 4، صفحات 413 تا 418.
4
سفیدکار، ر. و مظلومی، س.م.،1393. مروری بر تاثیر انواع روش های فرآوری بر مقدار باقی مانده آفت کش ها. در مواد غذایی گیاهی خام و فرآوری شده. مجله علمی پژوهشی دانشگاه علوم پزشکی ایلام. دوره 22، شماره 6، صفحات 24 تا 33.
5
Abou Arab, A.A.K., 1999. Behavior of pesticides in tomatoes during commercial and home preparation. Food Chemistry. Vol. 65, pp: 509-514.
6
Cengiz, M.; Certel, M. and Gocmen, H., 2006. Residue contents of DDVP (Dichlorvos) and diazinon applied on cucumbers grown in greenhouses and their reduction by duration of a pre-harvest interval and post harvest culinary applications. Food Chemistry. Vol. 98, pp: 127-135.
7
Holland, P.T.; Hamilton, D.; Ohlin, B. and Skidmore, M.W., 1994. Effects of storage and processing on pesticide residues in plant products. IUPAC Reports on Pesticides. Pure and Applied Chemistry. Vol. 66, No. 2, pp: 335-356.
8
Hwang, E.; Cash, J.N.; Zabik, M.J. and Hwang, E.S., 2001. Postharvest treatments for the reduction of mancozeb in fresh apples. J. Agricultural and Food Chemistry. Vol. 49, No. 6, pp: 3127-3132.
9
Jallow, M.F.A.; Awadh, D.G.; Albaho, M.S.; Devi, V.Y. and Ahmad, N., 2017. Monitoring of Pesticide Residues in Commonly Used Fruits and Vegetables in Kuwait. International Journal of Environmental Research and Public Health. Vol. 14, No. 8, pp: 833.
10
Kaushik, P.; Yadav, Y.K.; Dilbaghi, N. and K, G.V., 2008. Enrichment of vermicomposts prepared from cow dung spiked solid textile mill sludge using nitrogen fixing and phosphate solubilizing bacteria. Environmentalist. Vol. 28, pp: 283-287.
11
Kumar, B.; Mukherjee, D.P.; Sanjay, K.; Meenu, M.; Dev, P.; Singh, S.K. and Sharma, C.S., 2011. Bioaccumulationof heavy metals in muscle tissue of fishes from selected aquaculture ponds in east Kolkata wetlands. Annals of Biological Research. Vol. 2, No. 5, pp: 125-134.
12
Lentza Rizos, C. and Balokas, A., 2001. Residue levels of chlorpropham in individual tubers and composite samples of postharvest-treated potatoes. J. Agricultural and Food Chemistry. Vol. 49, No. 2, pp: 710-714.
13
Ling, Y.; Wang, H.; Yong, W.; Zhang, F.; Sun, L.; Yang, M.L. and Chu, X.G., 2011. The effects of washing and cooking on chlorpyrifos and its toxic metabolites in vegetables. Food Control. Vol. 22, No. 1, pp: 54-58.
14
Mehmet, F.G.; Certel, M. and Goçmen, H., 2006. Residue contents of DDVP (Dichlorvos) and diazinon applied on cucumbers grown in International Labour Organisation. International Journal of Production Research. Vol. 98, No. 1, pp: 127-135.
15
Radwan, M.A.; Abu-Elamayem, M.H. and Shiboob, AA., 2005. Residual behavior of profenfos on some fieldgrown vegetables and its removal usingvarious washing solutions and household processing. Food and Chemical Toxicology. Vol. 43, No. 1, pp: 553-557.
16
Rawn, D.F.K.; Quade, S.C.; Sun, W.; Fouget, A.; Belanger, A. and and Smith, M., 2008. Captan residue reduction in apples as a result of rinsing and peeling. Food Chemistry. Vol. 109, No. 1, pp: 790-796.
17
Soliman, KM., 2001. Changes in concentration of pesticide residues in potatoes during washing and preparation. Food and Chemical Toxicology. Vol. 39, pp: 887-891.
18
Zhang, Z.Y.; Zhang, C.Z.; Liu, X.J. and Hong, X.Y.; 2006. Dynamics of pesticide residues in the autumn Chinese cabbage (Brassica chinensis L) grown in open Welds. Pest Management Science. Vol. 62, pp: 350-355.
19
ORIGINAL_ARTICLE
تولید خامه قنادی کمچرب با استفاده از کنسانتره پروتئینی شیر گاو
خامه قنادی از پرمصرف ترین فرآورده های لبنی در صنایع غذایی است. در سال های اخیر در پی افزایش سطح آگاهی مردم در رابطه با مصرف چربی تقاضا برای محصولات کم چرب افزایش قابل توجهی یافته است. خامه با توجه به میزان بالای چربی زمینه تحقیقات زیادی را فراهم کرده است. هدف این پژوهش استفاده از کنسانتره پروتئین شیر جهت تولید خامه قنادی کم چرب بود. در این تحقیق از کنسانتره پروتئین شیر با درصدهای 2، 4، 6 و 8 درصد استفاده شد و شاخص های اسیدیته، ظرفیت نگه داری آب، ساکارز، ماده خشک، ویسکوزیته، مقدار چربی و مورد سنجش قرار گرفت. جهت تجزیه و تحلیل داده ها از نرم افزار 21 SPSS و جهت مقایسه میانگین ها از آزمون چند دامنه ای دانکن در سطح اطمینان 95 درصد استفاده شد. نتایج نشان داد با افزایش درصدهای کنسانتره پروتئین شیر شاخص های چربی خامه قنادی و اسیدیته کاهش و مقدار شاخص های ویسکوزیته و ماده خشک افزایش یافت (0/05≥p). هم چنین مقدار ظرفیت نگه داری آب برای تمامی تیمارها پایدار بود جهت انجام ارزیابی حسی پارامترهای طعم و مزه، عطر و بو، رنگ، بافت، غلظت و پذیرش کلی مورد ارزیابی قرار گرفت. نتایج این آزمون نشان داد بیش ترین امتیاز ارزیابی حسی متعلق به تیمار 3T (حاوی 6 درصد کنسانتره پروتئین شیر+ 54 درصد خامه) بود که با توجه به مقادیر شاخصهای ویسکوزیته، ظرفیت نگه داری آب و چربی کاهش یافته بود و این تیمار به عنوان تیمار برتر معرفی گردید.
http://www.aejournal.ir/article_105719_4c17ad4389be3acacb735e21d204bbd0.pdf
2020-03-20
435
442
10.22034/aej.2020.105719
خامه قنادی
کنسانتره پروتئین شیر
چربی
ظرفیت نگه داری آب
جواد
فرج زاده
javadfarajzadeh69@gmail.com
1
گروه علوم و صنایع غذایی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
علیرضا
شهاب لواسانی
shahabam20@yahoo.com
2
مرکز تحقیقات فناوری های نوین تولید غذای سالم ، واحد ورامین-پیشوا ، دانشگاه آزاد اسلامی ، ورامین ، ایران
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
اسحاقی
mr.eshaghi@yahoo.com
3
گروه علوم و صنایع غذایی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
امیری، ص. و رادی، م.، 1378. بررسی خصوصیات فیزیکوشیمیایی، بافتی و حسی- چشایی خامه کم چرب تهیه شده از نشاسته گندم اصلاح شده. هجدهمین کنگره ملی علوم و صنایع غذایی. مشهد، پژوهشکده علوم و صنایع غذایی خراسان رضوی.
1
موسسه تحقیقات استاندارد و صنعتی ایران. 1394. تعیین چربی در خامه قنادی، استاندارد ملی شماره 13635.
2
موسسه تحقیقات استاندارد و صنعتی ایران. 1389. شیر و فرآوردههای آن - خامه پاستوریزه و خامه فرادما (UHT) - ویژگی ها و روش های آزمون، استاندارد ملی شماره 191.
3
موسسه تحقیقات استاندارد و صنعتی ایران. 1387. بستنی، ویژگی ها و روش های آزمون، استاندارد ملی شماره 2450.
4
حسیبی، ف.، 1389. تولید منبع غنی از پپتیدهای عاری از فنیل آلانین با استفاده از هیدرولیز آنزیمی آب پنیر برای بیماران فنیل کتونوری، پایان نامه کارشناسی ارشد علوم و صنایع غذایی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه صنعتی اصفهان.
5
شهیدی، س.ا.؛ قربانی حسن سرایی، ا. و عندلیب، پ.، ۱۳۹۴. بهینه سازی تولید خامه قنادی رژیمی و بررسی ماده خشک و خواص ارگانولپیتیکی با استفاده از روش سطح پاسخ. چهارمین همایش ملی امنیت غذایی، سوادکوه، دانشگاه آزاد اسلامی واحد سوادکوه.
6
عزیزی، ش.؛ مرتضوی، س.ع.؛ شفافی زنوزیان، م. و هوشمند دلیر، م. ا.، ۱۳۹۲، کاربرد ایزوله پروتئین سویا (SPI) و صمغ ثعلب به عنوان پایدارکننده و جایگزین چربی در تولید خامه قنادی کم چرب. همایش ملی پدافند غیرعامل در بخش کشاورزی، جزیره قشم، شرکت تعاونی علم گستران پیشتاز ایرانیان.
7
غلامحسین پور، ع. ا. و مظاهری تهرانی، م.، 1390. استفاده از کنسانتره پروتئینی شیر در تولید خامه قنادی کم چرب و ارزیابی خواص فیزیکوشیمیایی و حسی آن. مجله علوم و صنایع غذایی. جلد 7، شماره 2، صفحات 172 تا 178.
8
نقی زاده رئیسی، ش.؛ شهیدی یاسقی، س.ا.؛ اسفندیاری، ز. و قربانی حسن سرایی، آ.، 1388. تأثیر پایدارکنندهها و مقدار چربی بر ویژگی های هم زنی و فیزیکی خامه قنادی. مجله الکترونیک فرآوری و نگه داری مواد غذایی. جلد 1، شماره 1، صفحات 73 تا 85.
9
Alvarez, V.B.; Wolters, C.L.; Vodovotz, Y. and Ji, T., 2005. Physical properties of ice cream containing milk protein concentrates. Journal of Dairy Science. Vol. 88, No. 3, pp: 862-871.
10
Emam Djome, Z.; Mousavi, M.E. and Ghorbani, A.V., 2008. Effect of WPC addition on the physical properties of homogenized sweetened dairy cream. International Journal of Dairy Technology. Vol. 67, No. 2, pp: 183-191.
11
Fernandes, R., 2009. Microbiology handbook dairy products, Biddles Ltd., King’s Lynn. pp: 37-39.
12
Marshall, R.T. and Arbuckle, W.S., 2005. Ice cream, Torkashvand, Y., Tehran, Eta. pp: 25-95.
13
Walstra, P.; Wouters, J.T.M. and Geurts, T.J., 2006. Dairy Sci. Technol, Taylor & Francis group., USA.
14
Zhao, Q.; Zhao, M.; Wang, j.; Wang, C. and Chun, C., 2007. Effect of sodium caseinate and whey protein on whipping properties and texture characteristics of whipped cream. Journal of Food Process Engineering. Vol. 31, pp: 671-683.
15
ORIGINAL_ARTICLE
نقش اثرات زیست محیطی در زنجیره تامین سبز پایدار (مطالعه موردی: صنعت کاشی و سرامیک ایران)
زنجیره های تأمین در سال های اخیر به سرعت رشد یافته اند چرا که تمرکز بر عملکرد اقتصادی برای بهینه سازی هزینه ها یا بازگشت سرمایه نمی تواند متضمن توسعه یاپایداری در زنجیره تأمین گردد. از این رو مفاهیم مدیریت زنجیره تأمین سبز و مدیریت زنجیره تأمین پایدار به منظور تأکید اهمیت نگرانی های اجتماعی و زیست محیطی همراه با عوامل اقتصادی در برنامه ریزی زنجیره تأمین ظهور یافتند. هدف از پژوهش حاضر طراحی الگوی زنجیره تأمین سبز پایدار با تمرکز بر اثرات زیست محیطی میباشد. صنعت کاشی و سرامیک به علت وفور مواد اولیه آن از قدیم در ایران مورد توجه بوده و با پیشرفت های صنعتی، امروزه یکی از صنایع پیشرو در کشور می باشد. عدم توجه به مسایل زیست محیطی در این صنعت موجب وارد شدن خسارات زیادی به محیط زیست می شود. این پژوهش از نظر هدف کاربردی و از نظر شیوه گردآوری داده ها توصیفی پیمایشی می باشد که با ماهیت آمیخته انجام شد. بدین منظور طی فرایند تحلیل محتوا و با روش دلفی مهم ترین مؤلفه ها، شناسایی و بومی سازی گردید. سپس بر اساس روابط شناسایی شده در تحقیقات گذشته الگوی مفهومی متناسب ارائه گردید. نهایتاً این الگو از طریق روش کمی با ابزار پرسشنامه و بر اساس نظرات خبرگان مورد نظرسنجی قرار گرفته و با روش حداقل مربعات جزئی مورد تحلیل قرار گرفت. نتایج حاکی از تایید روابط اصلی مدل و اهمیت نقش اثرات زیست محیطی در زنجیره تامین سبز پایدار بود.
http://www.aejournal.ir/article_105747_58832d86e96a416619ef9758fb954ecc.pdf
2020-03-20
443
452
10.22034/aej.2020.105747
زنجیره تامین سبز پایدار
اثرات زیست محیطی
تحلیل محتوا
صنعت کاشی و سرامیک
محمد تقی
هنری
mthonari@iauyazd.ac.ir
1
گروه مدیریت صنعتی، واحد یزد، دانشگاه آزاد اسلامی، یزد، ایران
AUTHOR
سیدحیدر
میرفخرالدینی
mirfakhr@yazd.ac.ir
2
دانشکده اقتصاد، مدیریت و حسابداری، دانشگاه یزد، یزد، ایران
LEAD_AUTHOR
حسن
دهقان دهنوی
h.dehghan@iauyazd.ac.ir
3
گروه مدیریت صنعتی، واحد یزد، دانشگاه آزاد اسلامی، یزد، ایران
AUTHOR
جلیل
توتونچی
totonchi@iauyazd.ac.ir
4
گروه اقتصاد، واحد یزد، دانشگاه آزاد اسلامی، یزد، ایران
AUTHOR
Ahmad, S., 2015. Green Human Resource Management: Policies and Practices. Cogent Business & Management. Vol. 2, No. 1, pp: 1-13.
1
Asghari, S., 2017. The fourth place in the export of ceramic and tile. on line www.smtnews.ir.
2
Ashby, A.; Leat, M. and Hudson-Smith, M., 2012. Making connections: a review of supply chain management and sustainability literature. supply Chain Management: An International Journal. Vol. 17, No. 5, pp: 497-516.
3
Azevedo, S.G.; Carvalho, H. and Cruz Machado, V., 2011. The influence of green practices on supply chain performance: a case study approach. Transportation research part E: logistics and transportation review. Vol.47, No. 6, pp: 850-871.
4
Brandenburg, M.; Govindan, K.; Sarkis, J. and Seuring, S, 2014. Quantitative models for sustainable supply chain management: Developments and directions. European Journal of Operational Research. Vol. 233, No. 2, pp: 299-312.
5
Braun, V. and Clarke, V., 2006. Using thematic analysis in psychology. Qualitative research in psychology. Vol.3, No. 2, pp: 82-93.
6
Boks, C. and Stevels, A., 2007. Sign for Environment. Experiences from The Electronics Industry. Int. J. of Production Research. Vol. 45, No. 18-19, pp: 4021-4039.
7
Bose, I. and Pal, R., 2012. Do green supply chain management initiatives impact stock prices of firms? Decision support systems.Vol. 52, No. 3, pp: 624-634.
8
Chin, T.A.; Tat, H.H. and Sulaiman, Z., 2015. Green Supply Chain Management, Environmental Collaboration and Sustainability Performance. 12th Global Conference on Sustainable Manufacturing. Procedia CIRP 26. pp: 695-699.
9
Dashore, K. and Sohani, N., 2013. GSCM - barriers & drivers: a review. International Journal of Engineering Trends and Technology. Vol. 2, pp: 2021-2030.
10
Diabat, A. and Govindan, K., 2011. An analysis of the drivers affecting the implementation of green supply chain management. Resources, Conservation and Recycling. Vol. 55, No. 6, pp: 659-667.
11
Dubey, R.; Gunasekaran, A.; Papadopoulos, T.; Childe, S.J.; Shibin, K.T. and Wamba, S.F., 2017. Sustainable supply chain management: framework and further research directions. Journal of Cleaner Production. Vol. 142, No. 2, pp: 1119-1130.
12
Esfahbodi, A.; Zhang, Y. and Watson, G., 2016. Sustainable supply chain management in emerging economies: Trade-offs between environmental and cost performance. International Journal of Production Economics.Vol. 181, pp: 350-366.
13
Geffen, C.A. and Rothenberg, S., 2000. Suppliers and environmental innovation: the automotive paint process. International Journal of Operations & Production Management. Vol. 20, No. 2, pp: 166-186.
14
Gonzalez, P.; Sarkis, J. and Adenso-Diaz, B., 2008. Environmental management system certification and its influence on corporate practices: evidence from the automotive industry. International Journal of Operations & Production Management. Vol.28, No. 11, pp: 1021-1041.
15
Govindan, K.; Rajendran, S.; Sarkis, J. and Murugesan, P., 2015. Multi Criteria Decision Making approaches for Green supplier evaluation and selection: A literature review. Journal of Cleaner Production. Vol. 95, pp:66-83.
16
Guide Jr, V.D.R. and Van Wassenhove, L.N., 2009. The evolution of closed loop supply chain research. Operations Research. Vol. 57, No. 1, pp: 10-18.
17
Hair, J.F.; Hult, G.T.; Ringle, C. and Sarstedt, M., 2017. A Primer on Partial Least Squares Structural Equation Modeling (PLS-SEM). pp: 22-75.
18
Holt, D. and Ghobadian, A., 2009. An empirical study of green supply chain management practices amongst UK manufacturers. Journal of Manufacturing Technology Management. Vol. 20, No. 2, pp: 933-956.
19
Igarashi, M.; De Boer, L. and Fet, A.M., 2013. What is required for greener supplier selection? A literature review and conceptual model development. Journal of Purchasing and Supply Management. Vol. 19, No. 4, pp: 247-263.
20
Kapil, K., 2015. Green Hrm: Trends & Prospects. Ge International Journal of management research. Vol. 3,No. 1, pp: 1321-1709.
21
King, A.A. and Lenox, M.J., 2001. Does it really pay to be green? An empirical study of firm environmental and financial performance. Journal of Industrial Ecology. Vol.5, No. 1, pp: 105-116.
22
Lee, S.M.; Kim, S.T. and Choi, D., 2012. GSCM and organizational performance. Industrial Management & Data Systems. Vol. 112, No. 8, pp: 1148-1180.
23
Liao, C.N.; Fu, Y.K. and Wu, L.C., 2017. Integrated FAHP, ARAS-F and MSGP methods for green supplier evaluation and selection. Technological and Economic Development Journal. Vol. 22, No. 5, pp: 651-669.
24
Lima-Junior, F.R. and Carpinetti, L.C.R., 2016. A multicriteria approach based on fuzzy QFD for choosing criteria for supplier selection. Computers & Industrial Engineering.Vol. 101, pp:269-285.
25
Linton, J.D.; Klassen, R. and Jayaraman, V., 2007. Sustainable supply chains: an introduction. Journal of Operations Management.Vol. 25, No. 6, pp: 1075-1082.
26
Luthra, S.; Garg, D. and Haleem, A., 2015. Critical Success Factors of Green Supply Chain Management for Achieving Sustainability in Indian Automobile Industry. Production Planning & Control. Vol.26, No. 5, pp: 339-362.
27
Mangla, S.; Madaan, J.; Sarma, P.R. and Gupta, M.P., 2014. Multi-objective decision modelling using interpretive structural modelling for green supply chains. International Journal of Logistics Systems and Management. Vol. 17, No. 2, pp: 125-142.
28
Paulraj, A., 2009. Environmental motivations: a classification scheme and its impact on environmental strategies and practices. Business Strategy and the Environment.Vol. 18, No. 7, pp; 453-468.
29
Rao, P. and Holt, D., 2005. Do green supply chains lead to competitiveness and economic performance? International Journal of Operations & Production Management. Vol. 25, No. 9, pp: 898-916.
30
Raut, R.D.; Narkhede, B. and Gardas, B.B., 2017. To identify the critical success factors of sustainable SCM practices in the context of oil and gas industries: ISM approach. Renewable and Sustainable Energy Reviews.Vol. 68, No. 1, pp: 33-47.
31
Sarkis, J.; Zhu, Q. and Lai, K.H., 2011. An organizational theoretic review of green supply chain management literature. International Journal of Production Economics. Vol.130, No. 1, pp: 1-15.
32
Sharma, V.K.; Chandna, P. and Bhardwaj, A., 2017. Green supply chain management related performance indicators in agro industry: A review. Journal of Cleaner Production. Vol. 141, pp:1194-1208.
33
Simpson, D.; Power, D. and Samson, D., 2007. Greening the automotive supply chain: a relationship perspective. International Journal of Operations & Production Management. Vol. 27, No. 1, pp: 28-48.
34
Srivastava, S.K., 2007. Green supply‐chain management: a state of the art literature review. International journal of management reviews. Vol. 9, No. 1, pp: 53-80.
35
Tay, M.; Abd Rahman, A.; Abdul Aziz, Y. and Sidek, S., 2015. A review on drivers and barriers towards sustainable supply chain practices. International Journal of Social Science and Humanity. Vol.5, No. 10, pp: 892-897.
36
Testa, F. and Iraldo, F., 2010. Shadows and lights of GSCM (Green Supply Chain Management): determinants and effects of these practices based on a multi-national study. Journal of Cleaner Production.Vol. 18, No. 10, pp: 953-962.
37
Vachon, S., 2007. Green supply chain practices and the selection of environmental technologies. Int. J. of Production Research.Vol. 45, pp: 4357-4379.
38
Vanalle, R.M.; Ganga, G.M.D.; Filho, M.G. and Lucato, W.C., 2017. Green supply chain management: An investigation of pressures, practices, and performance within the Brazilian automotive supply chain. Journal of Cleaner Production. Vol. 151,No. 8, pp: 250-259.
39
Venkatesh, J.; TA, L. and Bhatt, V., 2014. Sustainable Development and the Role of HRM: An Empirical Study of the IT Sector in India. International Journal of Innovative Research in Science, Engineering and Technology. Vol. 3,No. 8, pp: 15495-15500.
40
Walton, S.V.; Handfield, R.B. and Melnyk, S.A., 1998. The green supply chain: integrating suppliers into environmental management processes. Journal of Supply Chain Management. Vol. 34, No. 2, pp: 2-11.
41
Wua, H.H. and Chang, S.Y., 2015. A case study of using dematel method to identify critical factors in GSCM. Applied Mathematics and Computation. Vol. 256, pp:394-403.
42
Wu, C. and Barnes, D., 2016. An integrated model for green partner selection and supply chain construction. Journal of Cleaner Production. Vol. 112, pp: 2114-2132.
43
Zhu, Q.; Sarkis, J. and Geng, Y., 2005. Green supply chain management in China: pressures, practices and performance. International Journal of Operations & Production Management.
44
Vol. 25, No. 5, pp: 449-468.
45
Zhu, Q.; Sarkis, J. and Lai, K.H., 2008. Green supply chain management implications for closing the loop. Transportation Research Part E: Logistics and Transportation Review. Vol. 44, No. 1, pp: 1-18.
46
Zhu, Q. and Sarkis, J., 2004. Relationships between operational practices and performance among early adopters of GSCM practices in Chinese manufacturing enterprises. Journal of Operations Management. Vol. 22, No. 3, pp: 265-289.
47
Zhu, Q. and Sarkis, J., 2007. The moderating effects of institutional pressures on emergent green supply chain practices and performance. International Journal of Production Research. Vol. 45, No. 18-19, pp: 4333-4355.
48