ORIGINAL_ARTICLE
روابط فیلوژنتیکی گربه وحشی (Felis lybica/Felis silvestris) در ایران با استفاده از ژن میتوکندریایی NADH5 و امکان سنجی شناسایی گربه وحشی آسیایی (F. lybica ornata) به وسیله این نشانگر
گربه وحشی (Felis lybica/Felis silvestris) یکی از گربه سانانی است که پراکنش گسترده ای در بین خانواده گربه سانان دارد و دارای تهدیدی بالقوه، متمایز از سایر گربه سانان یعنی اختلاط با گربه اهلی است. ایران در محل تلاقی حوزه پراکنش دوگونه متفاوت از گربه وحشی یعنی Felis silvestris و Felis lybica واقع شده است، اما اطلاعاتی از وضعیت تاکسونومیک و هیبریداسیون گربه وحشی در ایران وجود ندارد. در مطالعه حاضر 814 جفت باز از قطعه NADH5 از ژنوم میتوکندری برای 38 نمونه گربه وحشی که از سطح زیستگاه های این گونه در ایران جمع آوری شده بود به منظور ارزیابی روابط تبارشناختی و تنوع ژنتیکی این گونه، توالی یابی شد. تحلیلهای تبارشناسی، گربه وحشی را در ایران به دو زیرکلاد تقسیم کرد. اما توالیهای ایران در ترکیب با توالیهای جهانی گربه وحشی (32 توالی) کلاد جداگانه ای تشکیل ندادند و در بین زیرکلادهای گربه وحشی آسیایی (ornata) و گربه وحشی آفریقایی/اهلی (lybcia/catus) قرار گرفتند. زیرکلادهای ایران براساس آماره (Fst= 0/66 (FST اختلاف معنی دار نشان دادند. 12هاپلوتایپ در دو موقعیت جغرافیایی مجزا در غرب و شرق رشته کوه زاگرس شناسایی شدند که در برخی مناطق با یکدیگر هم پوشانی داشتند. باز G در جایگاه شماره 13776 در ژن ND5 امکان شناسایی گربه وحشی آسیایی (F. l. ornata) را فراهم می کند که در مطالعه حاضر، 24 نمونه از بین 38 نمونه گربه وحشی در ارزیابی اولیه، به عنوان گربه وحشی آسیایی شناسایی شدند که نتیجه به دست آمده منطبق با درخت تبارشناسی ترسیم شده با استفاده از استنتاج بیزین بود. ضمن این که زیرکلاد گربه وحشی آسیایی تنوع ژنتیکی بالاتری را نسبت به زیرکلاد آفریقایی نشان داد.
http://www.aejournal.ir/article_105830_163c475f1a7cbfcde28e453a968737e9.pdf
2020-06-21
1
10
10.22034/aej.2020.105830
ژنوم میتوکندری
ژن NADH5
باز G
گربه وحشی آسیایی
هیبریداسیون
سیده مرضیه
موسوی
mrmussavi@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
حمیدرضا
رضایی
hamid.r.rezaei@gmail.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
سعید
نادری
ssnadery@gmail.com
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، رشت، ایران
AUTHOR
اسدی، م.؛ رضایی، ح. و زمانی، ن.، 1392. تبارشناسی زیرگونههای گرگ براساس نشانگرهای میتوکندریایی. پژوهش های محیط زیست. دوره 4، شماره 7، صفحات 13 تا 22.
1
موسوی، م.؛ رضایی، ح. و نادری، س.، 1397. پیشبینی پراکنش بالقوه گربه وحشی Felis silvestris با استفاده از الگوریتم حداکثر آنتروپی در ایران. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 10، شماره 1، صفحات 19 تا 24.
2
Baca, M.; Popović, D.; Panagiotopoulou, H.; Marciszak, A.; Krajcarz, M.; Krajcarz, M. T.; Daniel Makowiecki, D.; Węgleński, P. and Nadachowski, A., 2018. Human mediated dispersal of cats in the Neolithic Central Europe.Heredity )Edinb). Vol. 121, pp: 557-563.
3
Bandelt, H.J.; Forster, P. and Röhl, A., 1999. Median-joining networks for inferring intraspecific phylogenies. Molecular Biology and Evolution. Vol. 16, pp: 37-48.
4
Daniels, M.J.; Beaumont, M.A.; Johnson, P.J.; Balharry, D.; Macdonald, D.W. Barratt E., 2001.Ecology and genetics of wild-living cats in the north-east of Scotland and the implication for the conservation of the wildcat. Applied Ecology. Vol. 38, pp: 146-161.
5
Devillard, S.; Jombart, T.H.; Léger, F.; Pontier, D.; Say, L. and Ruette, S., 2013. How reliable are morphological and anatomical characters to distinguish European wildcats, domestic cats and their hybrids in France? Journal of Zoological Systematics and Evolutionary Research, Vol. 52, pp: 154-162.
6
Driscoll, C.A.; Menotti -Raymond, M.; Roca, A.L.; Hupe, K.; Johnson, W.E.; Geffen, E.; Harley, E.; Delibes, M.; Pontier, D.; Kitchener, A.C.; Yamaguchi, N.; O’Brien, S.J. and MacDonald, D., 2007. The near eastern origin of cat domestication. Science. Vol. 317, pp: 519-523.
7
Driscoll, C.; Yamaguchi, N.; O’Brien, S.J. and MacDonald, D.W., 2011. A suite of genetic markers useful in assessing wildcat (Felis silvestris spp.), domestic cat (Felis silvestris catus) admixture. Journal of Heredity. Vol. 102, No. 1, pp: 87-90.
8
Excoffier, L. and Lischer, H.E.L., 2010. Arlequin suite ver 3.5: a new series of programs to perform population genetics analyses under Linux and Windows. Molecular ecology. Vol. 10, pp: 564-567.
9
Ghoddousi, A.; Hamidi, A.K.; Ghadirian, T. and Baniasadi, S., 2016. The Status of wildcat in Iran: A Crossroad of Subspecies? Cat-News Special Issue. Vol. 10, pp: 60-63.
10
Kilshaw, K.; Johnson, P.J.; Kitchener, A.C. and Macdonald, D., 2014. Detecting the elusive Scottish wildcat Felis silvestris silvestris using camera trapping. Oryx. Vol. 49, pp: 1-9.
11
Kitchener, A.C.; Yamaguchi, N.; Ward, J.M. and Macdonald, D.W., 2005. A diagnosis for the Scottish wildcat (Felis silvestris): a tool for conservation action for a critically-endangered felid. Animal Conservation. Vol. 8, pp: 223-237.
12
Kitchener, A.C.; Britenmoser-Wursten, C.H.; Eiziruk, E. and Gentry, A., 2017. A revised taxonomy of the Felidae, The final report of the Cat Classification Task Force of IUCN/SSC Cat Specialist Group. Cat News Special Issue. Vol. 11, 80 p.
13
Librado, P. and Rozas, J., 2009. DnaSP v5: a software for comprehensive analysis of DNA polymorphism data. Bioinformatics. Vol. 25, pp: 1451-1452.
14
Lopez, J.V.; Culver, M.; Stephens, J.C.; Johnson, W.E. and O’Brien, S.J., 1997. Rates of nuclear and cytoplasmic mitochondrial DNA sequence divergence in mammals. Molecular Biology and Evolution. Vol. 14, pp: 277-286.
15
Macdonald, D.W. and Loveridge, A.J., 2010. Biology and conservation of wild felids. Oxford University Press, Oxford. 784 p.
16
Mouthereau, F.; Lacombe, O. and Vergés, J., 2012. Building the Zagros collisional orogen: timing, strain distribution and the dynamics of Arabia/Eurasia plate convergence. Tectonophysics. Vol. 532, pp: 27-60.
17
Nowell, K. and Jackson P., 1996. Wild cats: Status survey and conservation action plan. IUCN, Gland, Switzerland.
18
O’Brien, J.; Devillard, S.; Say, L.; Vanthomme, H.; Leger, F.; Ruette, S. and Pontier, D., 2009. Preserving genetic integrity in a hybridizing world: are European Wildcats (Felis silvestris silvestris) in eastern France distinct from sympatric feral domestic cats? Biodiversity and Conservation. Vol. 18, pp: 2351-2360.
19
Ottoni, C.; Van Neer, W.; De Cupere, B.; aligault, J.; Guimaraes, S.; Peters, J.; Spassov, N.; Prendergast, M.E.; Boivin, N.; Morales-Muñiz, A. and Bălăşescu, A., 2017. The palaeogenetics of cat dispersal in the ancient world. Nature Ecology & Evolution. Vol. 1, 139 p.
20
Posada, D., 2008. JModelTest: phylogenetic model averaging. Molecular Biology and Evolution. Vol. 25, pp: 1253-1256.
21
Purvis, A.; Gittleman, J.L. and Brooks, T.H., 2005. Phylogeny and Conservation. Cambridge University Press.
22
Ragni, B. and Possenti, M., 1996. Variability of coat‐colour and markings system in Felis silvestris. Italian Journal of Zoology. Vol. 63, pp: 285-292.
23
Ronquist, F. and Huelsenbeck, J.P., 2003. MrBayes 3: Bayesian phylogenetic inference under mixed models. Bioinformatics. Vol. 19, pp: 1572-1574.
24
Sagheb-Talebi, K.; Sajedi, T. and Pourhashemi, M., 2014. Forests of Iran: A Treasure from the Past, a Hope for the Future. Springer Berlin.
25
Say, L.; Devillard, S.; Leger, F.; Pontier, D. and Ruette, S., 2012. Distribution and spatial genetic structure of European wild cat in France. Animal Conservation. Vol. 15, pp: 18-27.
26
Senn, H.V.; Ghazali, M.; Kaden, J.; Barclay, D.; Harrower, B.; Campbell, R.D.; Macdonald, D.W. and Kitchener, A.C., 2018. Distinguishing the victim from the threat: SNPbased methods reveal the extent of introgressive hybridization between wildcats and domestic cats in Scotland and inform future in situ and ex situ management options for species restoration. Evolutionary applications. Vol. 12, pp: 399-414.
27
Tamada, T.; Kurose, N. and Masuda, R., 2005. Genetic diversity in domestic Felis catus of the Tsushima islands, Based on Mitochondrial DNA Cytochrome b and Control Region Nucleotide Sequence. Zoological science. Vol. 22, pp: 627-633.
28
Tamura, K.; Stecher, G.; Peterson, D.; Filipski, A. and Kumar, S., 2013. MEGA6: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 6.0. Molecular Biology and Evolution. Vol. 30, pp: 2725-2729.
29
Yamaguchi, N.; Driscoll, C.H.; Kitchener, A.C.; Ward, J.M. and Macdonald, D.W., 2004. Craniological differentiation between European wildcats (Felis silvestris silvestris), African wildcats (F. s. lybica) and Asian wildcats (F. s. ornata): implications for their evolution and conservation. Biological Journal of the Linnean Society. Vol. 83, pp: 47-63.
30
Weir, B.S. and Cockerham, C.C., 1984. Estimating F-statistics for the analysis of population structure. Evolution. Vol. 38, pp: 1358-1370.
31
ORIGINAL_ARTICLE
اولین گزارش خفاش نعل اسبی مدیترانه ای (Rhinolophus euryale) در استان مازندران
راسته خفاش ها در ایران شامل نه خانواده و ۵۲ گونه شناخته شده است. پنج گونه از خانواده Rhinolophidae در ایران گزارش شده است. همه اعضای این خانواده به وسیله وجود شکل نعل اسب در جلوی برگه بینی شناخته می شوند، که ریخت شناسی آن می تواند صفت تشخیصی بین گونه ها باشد. خصوصیات دیگری که معمولاً برای تشخیص گونه های خانواده Rhinolophidae استفاده می شود شامل اندازه های خارجی، جمجمه و دندان است. یکی از پنج گونه ایرانی، خفاش نعل اسبی مدیترانه ای (Rhinolophus euryale) است که در استان های اصفهان، فارس، کردستان، لرستان، آذربایجان غربی، چهارمحال بختیاری، گلستان، همدان، ایلام، کرمانشاه، خراسان رضوی، خراسان شمالی و خوزستان گزارش شده است. در این مطالعه، یک جمعیت از R. euryale از شهر رستمکلا (استان مازندران) به عنوان اولین گزارش از این استان یافت گردید. خفاش R. euryale به وسیله دست و تور در ماه های مهر و آبان ماه سال 1396 از رستمکلا جمع آوری شده است. نمونه ها به وسیله کلید شناسایی تشخیص داده شدند. در این مطالعه 16 صفت مورفومتری خارجی و 12 صفت مورفومتری جمجمه و دندان اندازه گیری شدند و آماره ها گزارش شده است. همه نمونه ها بالغ بوده و فقط یکی از نمونه ها انگل خارجی داشت. اندازه های صورت گرفته نشان از اولین گزارش این گونه و آماره های آن از استان مازندران است
http://www.aejournal.ir/article_105863_62a39f98c42bf047fbf5bf7ca1462c5e.pdf
2020-06-21
11
20
10.22034/aej.2020.105863
خفاش نعل اسبی مدیترانه ای
Rhinolophus euryale
استان مازندران
مهساالسادات
یعقوبی رستمی
nikoo.roham@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران
AUTHOR
حاجی قلی
کمی
hgkami2000@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
علی اکبر
باقریان یزدی
alibagherianyazdi@gmail.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران
AUTHOR
نجمه
اخلی
n.okhli@yahoo.com
4
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران
AUTHOR
اعتماد، ا.، 1363. پستانداران ایران جلد سوم. چاپ اول، تهران، انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. 294 صفحه.
1
شباهنگ، ک.، 1385. رستمکلا از دیروز تا امروز. چاپ اول، انتشارات پرهیب. 248 صفحه.
2
ضیایی، ه.، 1375. راهنمای صحرایی پستانداران ایران. چاپ اول، تهران، چاپخانه بهمن. 299 صفحه.
3
ضیایی، ه.، 1387. راهنمای صحرایی پستانداران ایران. چاپ دوم، تهران، کانون آشنایی با حیاتوحش. 432 صفحه.
4
فتحی پور، ف.؛ اکملی، و. و شریفی، م.، ۱۳۹۴. بررسی تنوع و پراکنش خفاش های نعل اسبی در استان ایلام. دومین کنگره ملی زیست شناسی و علوم طبیعی ایران. تهران، مرکز راهکارهای دستیابی به توسعه پایدار و موسسه آموزش عالی مهر اروند.
5
فیروز، ا.، 1378. حیات وحش ایران ( مهرهداران). چاپ اول، تهران، مرکز نشر دانشگاهی با همکاری انتشارات دایره سبز. 491 صفحه.
6
کرمی، م.؛ قدیریان، ط. و فیض اللهی، ک.، 1395. اطلس پستانداران ایران. چاپ اول، تهران، انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. 79 صفحه.
7
هرینگتون، ف.ا. و فرهنگ دره شوری، ب.، 1355. راهنمای پستانداران ایران. تهران، سازمان حفاظت محیط زیست. 93 صفحه.
8
Benda, P.; Faizolâhi, K.; Andreas, M.; Obuch, J.; Reiter, A.; Ševčík, M.; Uhrin, M.; Vallo, P. and Ashraf i, S., 2012. Bats (Mammalia: Chiroptera) of the Eastern Mediterranean and MiddleEast. Part 10. Bat fauna of Iran. Acta Soc. Zool. Bohem. Vol. 76, pp: 163-582.
9
De Blasé, A.F., 1980. The bats of Iran: Systematics, distribution, ecology. Field museum of natural history. Vol. 4, No. 1, pp: 1- 424.
10
Eghbali, H.; Shahabi, S.; Najafi, N.; Mehdizadeh, R.; Yousefi, Sh. and Sharifi, M., 2017. Postnatal growth, wing development and age estimations in the Mediterranean horseshoe bat Rhinolophus euryale (Chiroptera: Rhinolophidae) in Kerend cave, western Iran. Journal of mammalian. Vol. 82, No. 3, pp: 276-287.
11
Fathipour, F.; Sharifi, M. and Akmali, V., 2016. Distribution of cavernicolous bat fauna in Ilam province, western and southwestern of the Iranian Plateau. Journal of animal biosystematics. Vol. 12, No. 1, pp: 97-110.
12
Gutierrez, E. and Smolinar, A., 2008. Morphometrics and taxonomy of bats of the genus Pteronotus (subgenus Phyllodia) in Venezuela. Journal of Mammalogy. Vol. 89, No. 2, pp: 292-305.
13
Karami, M.; Hutterer, R.; Benda, P.; Siahsarvie, R. and Krystufek, B., 2008. Annotated checklist of mammals of Iran. Lynx (Praha), n.s. Vol. 39, No. 1, pp: 63-108.
14
Lay, D.M., 1967. A study of the mammals of Iran resulting from the street expedition of 1962-1963. Fieldiana Zoology. Vol. 54, pp: 1-282.
15
Sotero-Caio, C.; Baker, R. and Volleth, M., 2017. Chromosomal evolution in Chiroptera. Journal of Genetics & Genomics. Vol. 8, No. 10, pp: 272.
16
www.google.com/maps
17
www.bahesab.ir
18
Yusefi, G.H.; Faizolahi, K.; Darvish, J.; Safi, K. and Brito, J.C., 2019. The species diversity, distribution, and conservation status of the terrestrial mammals of Iran. Journal of Mammalogy. Vol. 100, No. 1, pp: 55-71.
19
ORIGINAL_ARTICLE
بارزسازی نقش ارتفاع در جابهجایی گونههای حیاتوحش مناطق کوهستانی با تاکید بر مناطق حفاظت شده: مطالعه موردی استان کرمانشاه
کوهستان ها، اکوسیستم های منحصربه فردی هستند که براساس تنوع و پیچیدگی توصیف می شوند. تغییرات توپوگرافی شدید و گرادیان های اقلیمی و زیستی با تضادهای شدید فصلی و شکنندگی از ویژگی این مناطق است. با افزایش فشار بر گونه های حیات وحش، مناطق مرتفع به عنوان آخرین پناهگاه های حیات وحش ایفای نقش می کنند. ارتفاع در تشکیل این مناطق نقش بسیار کلیدی دارد که سایر عوامل محیطی را نیز به شکل مستقیم و یا غیرمستقیم تحت تأثیر قرار می دهد. محدودیت ارتفاعی در استفاده از سرزمین، مانعی برای توسعه لگام گسیخته و درنتیجه دست ورزی به این مناطق شده است. به منظور بررسی جابه جایی گونه های مناطق حفاظت شده کوهستانی استان، موقعیت مشاهده 17 گونه از پرندگان و پستانداران استان شناسایی شد. سپس نقشه هزینه جابه جایی با استفاده از وزن دهی به طبقات مختلف ارتفاع تهیه شد. از روش های تحلیل کم ترین هزینه مسیر (least cost path analysis) و تئوری مدار الکتریکی (Circuitscape) و هم چنین متریک های مربوط به هریک، برای مدل سازی و تحلیل مسیر جابه جایی حیات وحش استفاده شد. بر اساس نتایج تئوری مدار 15 دالان زیستگاهی با طول 1363 کیلومتر شناسایی شد. پناهگاه حیات وحش بیستون و منطقه شکار ممنوع بوزین و مرخیل بیش ترین نقش را در برقراری ارتباطات سیمای سرزمین مناطق حفاظت شده برعهده دارند. براساس نتایج تحلیل کم ترین هزینه، 26 کریدور با طول 4317 کیلومتر مدل سازی شد. متریک های مطلوبیت و تراکم استفاده از دالان در روش کم ترین هزینه نشان دادند که مطلوب ترین کریدور برای جابه جایی گونه های حیات وحش در مسیر کوههای بیستون، پرآو و خورین به سمت رشته کوه شاهو قرار دارد.
http://www.aejournal.ir/article_105695_488973609b2eaf38e910e6a53905c32e.pdf
2020-06-21
21
30
10.22034/aej.2020.105695
اتصالات سیمای سرزمین
بیستون
شاهو
بوزین و مرخیل
ارتفاع
کرمانشاه
پیمان
کرمی
peymankarami1988@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
AUTHOR
کامران
شایسته
ka_shayesteh@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
LEAD_AUTHOR
نصرالله
رستگار
nasrullah.r@gmail.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه رازی، کرمانشاه، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، ا.؛ احمدزاده، ف. و نعیمی، ب.، 1397. مناطق داغ زیستگاهی گربه سانان ایران تحت اقلیم کنونی. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 10، شماره 4، صفحات 1 تا 12.
1
حسن زاده ناورودی، ا. و قادری، ا.، 1396. اثر سطح دریا بر خصوصیات رویشی درختان بلوط وی ول (Quercus libaniOlive.) در استان کردستان. فصلنامه بوم شناسی جنگل های ایران. سال 5، شماره 9، صفحات 1 تا 7.
2
خالوندی، ع.ا.، 1395. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه کل و بز (Capra aegagrus) در منطقه حفاظت شده و پناهگاه حیات وحش بیستون با استفاده از روش آنتروپی بیشینه (MaxEnt). پایان نامه کارشناسی ارشد محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست. دانشگاه ملایر. 125 صفحه.
3
رضائی، س.؛ نادری، س. و کرمی، پ.، 1397. بررسی مطلوبیت زیستگاه کفتار راه راه (Hyaena hyaena) در منطقه حفاظت شده هفتاد قله اراک. فصلنامه پژوهشی های جانوری. دوره 31، شماره 2، صفحات 147 تا 158.
4
زنگی آبادی، س.؛ ناصری، ف.؛ مقدم، ع. و پورمیرزایی، ا.، 1392. بررسی وضعیت پارمترهای اقلیمی و توپوگرافی ذخیره گاه جنگلی ارس گلوچار واقع در استان کرمان. دومین همایش تغییر اقلیم و تاثیر آن بر کشاورزی و محیط زیست. ارومیه. 8 صفحه.
5
عبدالهی، ص. و ایلدرومی، ع.، 1396. ارزیابی چیدمان مکانی سیمای سرزمین بهمنظور دستیابی به اقدامات حفاظتی. فصلنامه محیط زیست و توسعه. سال 8، شماره 16، صفحات 5 تا 18.
6
عرفانیان، ب.؛ میرکریمی، س.ح.؛ سلمان ماهینی، ع. و رضایی، ح.م.، 1394. مکان یابی احداث گذرگاه برای پلنگ (Panthera pardus) در پارک ملی گلستان. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 7، شماره 4، صفحات 1 تا 10.
7
غلامی، ش. و صیاد، ا.، 1394. توصیف فرکتالی تاج پوشش درختان و چگالی ظاهری خاک در جنگل های زاگرس (مطالعه موردی منطقه حفاظت شده بیستون). فصلنامه بوم شناسی کاربردی. سال4، شماره 12، صفحات 77 تا 85.
8
فلاحتی، س.، 1397. بررسی وضعیت زیستگاه خرس قهوه ای (Ursus arctos) از منظر سیمای سرزمین در منطقه حفاظت شده قلاجه. پایان نامه کارشناسی ارشد محیط زیست. دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر. 144 صفحه.
9
کرمی، پ.، 1393. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه آهوی ایرانی (Gazella Subgutturosa Subgutturosa) در منطقه تیراندازی و شکار ممنوع قراویز با استفاد از تجزیه و تحلیل آشیان اکولوژیک (ENFA) پایان نامه کارشناسی ارشد محیط زیست. دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه هرمزگان، بندرعبارس. 125 صفحه.
10
کرمی، پ. و شایسته، ک.،1397. مدل سازی دالان های زیستگاهی با استفاده از روش تجسم در مدل آنتروپی بیشینه مطالعه موردی: قوچ و میش (Ovis orientalis) مناطق حفاظت شده استان های مرکزی و همدان. فصلنامه سنجش از دور و سامانه اطلاعات جغرافیایی در منابع طبیعی. سال 9، شماره 4، صفحات 37 تا 54.
11
کرمی، پ.؛ شایسته، ک.؛ کرمی، ا. و حسینی، س.م.، 1397. شناسایی دالان های زیستگاهی گوسفند وحشی ارمنی (Ovis Orientalis) در بستر سیمای مبتنی بر تئوری مدار الکتریکی (مطالعه موردی: مناطق لشگردر و گلپرآباد). مجله پژوهش های جانوری. دوره 31، شماره 3، صفحات 259 تا 306.
12
لطفی، ع.؛ قدیریان، ا. و اصغری، ز.، 1396. ارزیابی اثر بخشی مناطق حفاظت شده استان اصفهان در کاهش اثرات خشکسالی و مداخلات انسانی. مجله علمی پژوهشی اکوسیستم بیابان. سال 6، شماره 14، صفحات 69 تا 78.
13
ملکوتی خواه، ش.؛ فاخران، س. و سفیانیان، ع.، 1392. استفاده از تئوری مدارهای الکتریکی جهت شناسایی کریدورهای مهاجرتی بین پناهگاه های حیات وحش موته و قمشلو در استان اصفهان. فصلنامه اکولوژی کاربردی. سال 2، شماره 5، صفحات 77 تا 88.
14
یوسفی.، م.؛ اشرفی، س.؛ کفاش، ا. و داور، ل.، 1395. بررسی میزان پوشش بیوم های خشکی ایران به وسیله مناطق حفاظت شده. فصلنامه محیط زیست طبیعی. دوره 69، شماره 9، صفحات 581 تا 595.
15
Barnes, T.G., 2000. Landscape Ecology and Ecosystems Management. Agric. Exten. Serv. Publ. FOR. 76 p.
16
Beier, P.; Majka, D.R. and Spencer, W.D., 2008. Forks in the road: choices in procedures for designing wildland linkages. Conservation Biology. Vol. 4, pp: 836-851.
17
Calabrese, J.M. and Fagan, W.F., 2004. A comparison shopper's guide to connectivity metrics. Frontiers in Ecology and the Environment. Vol. 10, pp: 529-536.
18
Cassirer, E.F.; Freddy, D.J. and Ables, E.D., 1992. Elk responses to disturbance by cross-country skiers in Yellowstone National Park. Wildlife Society Bulletin (1973-2006). Vol. 4, pp: 375-381.
19
Chetkiewicz, C.L.B.; St. Clair, C.C. and Boyce, M.S., 2006. Corridors for conservation: integrating pattern and process. Annu. Rev. Ecol. Evol. Syst. Vol. 37, pp: 317-342.
20
Chettri, B.; Bhupathy, S. and Acharya, B.K., 2010. Distribution pattern of reptiles along an eastern Himalayan elevation gradient, India. Acta Oecologica. Vol. 1, pp: 16-22.
21
CÔTÉ, S.D., 1996. Mountain goat responses to helicopter disturbance. Wildlife Society Bulletin. Vol. 4, pp: 681-685.
22
Cushman, S.A.; McKelvey, K.S.; Hayden, J. and Schwartz, M.K., 2006. Gene flow in complex landscapes: testing multiple hypotheses with causal modeling. American Naturalist. Vol. 168, pp: 486-499.
23
Cushman, S.A.; McRae, B.H.; Adriansen, F.; Beier, P.; Shirley, M. and Zeller, K., 2013. Biological corridors and connectivity. In: Key Topics in Conservation Biology2, ed. MacDonald D. and Willis, K.J., New York, USA: Wiley. pp: 384-404.
24
Dirnböck, T.; Essl, F. and Rabitsch, W., 2011. Disproportional risk for habitat loss of high‐altitude endemic species under climate change. Global Change Biology. Vol. 2, pp: 990-996.
25
Do, M.S. and Yoo, J.C., 2014. Distribution pattern according to altitude and habitat type of Red-tongue viper snake (Gloydius ussuriensis) in Cheon-ma Mountain. J of Wetland Research. Vol. 2, pp: 193-204 (In Korean with English abstract).
26
Duerr, A.E.; Miller, T.A.; Dunn, L.; Bell, D.A.; Bloom, P.H.; Fisher, R.N.; Tracey, J.A. and Katzner, T.E., 2019. Topographic drivers of flight altitude over large spatial and temporal scales. The Auk: Ornithological Advances. Vol. 2, p.ukz 002.
27
Epps, C.W.; Wehausen, J.D.; Bleich, V.C.; Torres, S.G. and Brashares, J.S., 2007. Optimizing dispersal and corridor models using landscape genetics. J Appl Ecol. Vol. 44, pp: 714-724.
28
Ferreras, P., 2001. Landscape structure and asymmetrical inter-patch connectivity in a metapopulation of the endangered Iberian lynx. Biological Conservation. Vol. 100, pp: 125-136.
29
Histøl, T. and Hjeljord, O., 1993. Winter feeding strategies of migrating and nonmigrating moose. Canadian Journal of Zoology. Vol. 71, pp: 1421-1428.
30
Hughes, L., 2000. Biological consequences of global warming: is the signal already apparent? trends in ecology and evolution. Vol. 15, pp: 56-61.
31
Ibisch, P.L.; Hoffmann, M.T.; Kreft, S.; Pe’er, G.; Kati, V.; Biber-Freudenberger, L.; DellaSala, D.A.; Vale, M.M.; Hobson, P.R.; Selva, N. A., 2016. Global map of roadless areas and their conservation status. Science. Vol. 354, pp. 1423-1427.
32
Igota, H.; Sakuragi, M.; Uno, H.; Kaji, K.; Kaneko, M.; Akamatsu, R. and Maekawa, K., 2004. Seasonal migration patterns of female sika deer in eastern Hokkaido. Ecological Research. Vol. 19, pp: 169-178.
33
Johnston, N.N.; Bradley, J.E. and Otter, K.A., 2014. Increased flight altitudes among migrating Golden Eagles suggest turbine avoidance at a Rocky Mountain wind installation. PloS one. Vol. 3, p. e93030.
34
Katzner, T.E.; Brandes, D.; Miller, T.; Lanzone, M.; Maisonneuve, C.; Tremblay, J.A.; Mulvihill, R. and Merovich Jr, G.T., 2012. Topography drives migratory flight altitude of golden eagles: implications for on‐shore wind energy development. Journal of Applied Ecology. Vol. 5, pp: 1178-1186.
35
Kerr, J.T. and Packer, L., 1997. Habitat heterogeneity as a determinant of mammal species richness in high-energy regions. Nature. Vol. 385, pp: 252-254.
36
Kim, J.Y., 2013. Morphological variation and distribution of three wild rodent species along altitudinal and latitudinal gradients in the Baedudaegan Mountains in Korea. Master's Thesis, Kangwon National University, Korea (In Korean with English abstract).
37
Kohler, T. and Maselli, D., 2009. Mountains and Climate Change - From Understanding to Action. Geographica Bernensia. Bern, Switzerland. 80 p.
38
Kuck, L.; Hompland, G.L. and Merrill, E.H., 1985. Elk calf response to simulated mine disturbance in southeast Idaho.J. Wildl. Manage. Vol. 49, pp: 751-757.
39
Liechti, F., 2006. Birds: blowin’by the wind? Journal of Ornithology. Vol. 2, pp: 202-211.
40
Macchi, M., 2010. Mountains of the World–Ecosystem Services in a Time of Global and Climate Change: Seizing Opportunities–Meeting Challenges. International Centre for Integrated Mountain Development (ICIMOD), Kathmandu, Nepal. 20 p.
41
Mateo-Sánchez, M.C.; Balkenhol, N.; Cushman, S.; Pérez, T.; Domínguez, A. and Saura, S., 2015. Estimating effective landscape distances and movement corridors: comparison of habitat and genetic data. Ecosphere. Vol. 4, pp: 1-16.
42
O’Brien, D.; Manseau, M.; Fall, A. and Fortin, M.J.; 2006. Testing the importance of spatial configuration of winter habitat for woodland caribou: an application of graph theory. Biological Conservation. Vol. 130, pp: 70-83.
43
Papouchis, C.M.; Singer, F.J. and Sloan, W.B., 2001. Responses of desert bighorn sheep to increased human recreation.J. Wildl. Manage. Vol. 65, pp: 573-582.
44
Paudel, P.K. and Heinen, J.T., 2015. Conservation planning in the Nepal Himalayas: Effectively (re) designing reserves for heterogeneous landscapes, Applied Geography. Vol. 56, pp: 127-134.
45
Price, M.F. and Butt, N., 2000. Forests in sustainable mountain development: A State-of- Knowledge Report for 2000. CABI Publishing, Wallingford, UK. 9 p.
46
Rahbek, C. and Graves, G.R., 2001. Multiscale assessment of patterns of avian species richness. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. Vol. 98, pp: 4534-4539.
47
Randin, F.C.; Engler, R.; Normand, S.; Zappaz, M.; Klaus, E.N.; Immermann, Z.; Pearman, P.B.; Vittoz, P.; Thuiller, W. and Antoine, G., 2009. Climate change and plant distribution: local models predict high-elevation persistence. Glob Chang Biol. Vol. 15, pp: 1557-1569.
48
Schwartz, M.W.; Iverson, L.R.; Prasad, A.M.; Matthews, S.N. and O'Connor, R.J., 2006. Predicting extinctions as a result of climate change. Ecology. Vol. 7, pp: 1611-1615.
49
Selva, N.; Switalski, A.; Kreft, S. and Ibisch, P.L., 2015. Why keep areas road-free? The importance of roadless areas. Handbook of road ecology. pp: 16-26.
50
Singer, F.J.; Bleich, V.C. and Gudorf, M.A., 2000. Restoration of bighorn sheep metapopulations in and near western national parks. Restoration Ecology. Vol. 4S, pp: 14-24.
51
Singleton, P.H.; Gaines, W.L. and Lehmkuhl, J.F., 2002. Landscape permeability for large carnivores in Washington: a geographic information system weighted-distance and least-cost corridor assessment. USDA, Forest Service, Pacific Northwest Research Station, Portland, Oregon, USA.
52
Spear, S.F.; Peterson, C.R.; Matocq, M.D. and Storfer, A., 2005. Landscape genetics of the blotched Tiger salamander (Ambystoma tigrinum melanostictum). Molecular Ecology. Vol. 14, pp: 2553-2564.
53
Storfer, A.; Murphy, M.; Evans, J.; Goldberg, C.; Robinson, S.; Spear, S.; Dezzani, R.; Delmelle, E.; Vierling, L. and Waits, L., 2007. Putting the ‘landscape’ in landscape genetics. Heredity. Vol. 98, pp: 128-142.
54
Tang, C.Q. and Ohsawa, M., 1997. Zonal Transition of Evergreen, Deciduous, and Coniferous Forests Along the Altitudinal Gradient on a Humid Subtropical Mountain, Mt. Emei, Sichuan, China. Plant Ecol. Vol. 1, pp: 63-78.
55
Umming, H.G. and Beange, D.B., 1987. Dispersion and movements of woodland caribou near Lake Nipigon, Ontario. Journal of Wild life Management. Vol. 51, pp: 69-79.
56
UNEP-WCMC. 2002 Mountain Watch: Environmental Change and Sustainable Development in Mountains. UNEP WCMC, Cambridge, UK.
57
Vignieri, S.N., 2005. Streams over mountains: influence of riparian connectivity on gene flow in the Pacific jumping mouse (Zapus trinotatus). Mol Ecol. Vol. 14, pp. 1925-1937.
58
Vuren, D.V., 1983. Group dynamics and summer home range of bison in Southern Utah. Journal of Mammalogy. Vol. 64, pp: 329-332.
59
Ye, X.; Yu, X.; Yu, C.; Tayibazhaer, A.; Xu, F.; Skidmore, A.K. and Wang, T., 2018. Impacts of future climate and land cover changes on threatened mammals in the semi-arid Chinese Altai Mountains. Science of the total environment. Vol. 612, pp: 775-787.
60
Zeller, K.A.; McGarigal, K. and Whiteley, A.R., 2012. Estimating landscape resistance to movement: a review. Landscape ecology. Vol. 6, pp: 777-797.
61
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی ارتباط میزان کاهش نمره بدنی پس از زایمان، فصل و تعداد شیرواری بر بروز ورم پستان بالینی در گاو شیری
تعادل منفی انرژی که معمولاً در دوره انتقالی اتفاق می افتد، می تواند با اثرات مهمی در زندگی دام همراه باشد که از آن جمله می توان به کاهش نمره وضعیت بدنی حیوان اشاره نمود، این مطالعه با هدف بررسی ارتباط بین میزان کاهش نمره وضعیت بدنی، فصل و شیرواری با وقوع ورم پستان بالینی در هفته های ابتدایی پس از زایمان در یکی از دامداری های استان فارس و روی 1613 رأس گاو شیری صورت گرفته است. در رابطه با هر گاو وضعیت نمره بدنی، وضعیت ورم پستان و تعداد کارتیه های درگیر با توجه به تعداد شیرواری و فصل زایمان در دو نوبت ارزیابی شد که نوبت اول در 2 یا 3 روز قبل از زایمان و نوبت دوم حدود یک ماه (3±30 روز) پس از زایمان انجام شد. درنهایت نیز نتایج به دست آمده با استفاده از نرم افزار SPSS و به کمک آزمون مربع کای مورد تجزیه و تحلیل آماری قرارگرفت. نتایج نشان داد که وقوع ورم پستان بالینی به طور معنی داری تحت تاثیر نمره وضعیت بدنی و نیز تعداد شیرواری قرارگرفته است. به صورتی که با کاهش بیش تر نمره وضعیت بدنی میزان وقوع ورم پستان بالینی افزایش می یابد و افزایش تعداد شیرواری در عمر اقتصادی گاو با افزایش ابتلا به ورم پستان بالینی همراه می باشد. اما تاثیر فصل بر میزان وقوع این عارضه معنی دار نبود (0/05<P).
http://www.aejournal.ir/article_105876_fe651dcedad6f084c306da90cf91ecb1.pdf
2020-06-21
31
36
10.22034/aej.2020.105876
ورم پستان
نمره وضعیت بدنی
گاو
تعداد شیرواری
سجده
کمالی
kamalisojdeh@yahoo.com
1
گروه تغذیه و اصلاح نژاد دام، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
میثم
مکی
meysam.makki@yahoo.com
2
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
رحیم
احمدی
rahimahmadi@yahoo.com
3
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
مهدی
پورمهدی بروجنی
pourmahdim@scu.ac.ir
4
دانشیار گروه بهداشت مواد غذایی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران.
AUTHOR
محبی، م.، 1390. گاوهای شیری: پیوند بهداشت و مدیریت گله. انتشارات دانشگاه شیراز. چاپ اول 320 صفحه.
1
Bar, D.; Tauer, L.W.; Bennett, G.; Gonzalez, R.N.; Hertl, J.A.; Schukken, Y.H.; Schulte, H.F.; Welcome L.F. and Grohn, Y.T., 2008. The cost of generic clinical mastitis in dairy cows as estimated by using dynamic programming. Journal of dairy science. Vol. 91, pp: 2205-2214.
2
Bareille, N.; Beaudeau, F.; Billon, S.; Robert, A. and Faverdin, P., 2003. Effects of health disorders on feed intake and milk production in dairy cows. Livestock production science. Vol. 83, pp: 53-62.
3
Barkema, H.; Schukken, Y.; Lam, T.; Beiboer, M.; Benedictus, G. and Brand, A., 1998. Management practices associated with low, medium, and high somatic cell counts in bulk milk. Journal of dairy science. Vol. 81, pp: 1917-1927.
4
Batra, T.; Nonnechke, B.; Newbould, F. and Hacker, R., 1977. Incidence of Clinical Mastitis in a Herd of Holstein Cattle. Journal of dairy science. Vol. 60, pp: 1169-1172.
5
Berry, D.; Lee, J.; Macdonald, K.; Stafford, K.; Matthews, L. and Roche, J., 2007. Associations among body condition score, body weight, somatic cell count, and clinical mastitis in seasonally calving dairy cattle. Journal of dairy science. Vol. 90, pp: 637-648.
6
Bludau, M.J.; Maeschli, A.; Leiber, F.; Steiner, A. and Klocke, P., 2014. Mastitis in dairy heifers: prevalence and risk factors. The Veterinary Journal. Vol. 202, pp: 566-572.
7
Breen, J.; Green, M. and Bradley, A., 2009. Quarter and cow risk factors associated with the occurrence of clinical mastitis in dairy cows in the United Kingdom. Journal of dairy Science. Vol. 92, pp: 2551-2561.
8
Dang, A.K.; Prasad, S.; Mukherjee, J. and Keylan, D.E., 2010. Effect of different physiological stages and managemental practices on milk somatic cell counts of Murrah buffaloes. 9th world Buffalo Congress (Milk Production). pp: 549-551.
9
Hossein-Zadeh, N.G. and Ardalan, M., 2011. Cow-specific risk factors for retained placenta, metritis and clinical mastitis in Holstein cows. Veterinary research communications. Vol. 35, pp: 345-354.
10
Jánosi, S.; Kulcsár, M.; Kóródi, P.; Katai, L.; Reiczigel, J.; Dieleman, S.; Nikolic, J.A.; Sályi, G.; Ribiczey-Szabó, P. and Huszenicza, G., 2003. Energy imbalance related predisposition to mastitis in group-fed high-producing postpartum dairy cows. Acta Veterinaria Hungarica. Vol. 51, pp: 409-424.
11
Mirjana, J.T., 2013. Clinical mastitis in Macedonian dairy herds. Acta Veterinaria. Vol. 63, pp: 63-76.
12
Nava-Trujillo, H.; Soto-Belloso, E. and Hoet, A.E., 2010. Effects of clinical mastitis from calving to first service on reproductive performance in dual-purpose cows. Animal reproduction science. Vol. 121, pp: 6-12.
13
Rahman, M.; Bhuiyan, M. and Kamal, M., 2009. Shamsuddin M. Prevalence and risk factors of mastitis in dairy cows. Bangladesh Veterinarian. Vol. 26, pp: 54-60.
14
Riekerink, R.O.; Barkema, H. and Stryhn, H., 2007. The effect of season on somatic cell count and the incidence of clinical mastitis. Journal of dairy science. Vol. 90, pp: 1704-1715.
15
Sargeant, J.M.; Scott, H.M.; Leslie, K.E.; Ireland, M.J. and Bashiri, A., 1998. Clinical mastitis in dairy cattle in Ontario: frequency of occurrence and bacteriological isolates. The Canadian Veterinary Journal. Vol. 91, No. 6, pp: 2205-2214.
16
Singh, V.K.; Singh, S.P. and Sahoo, B., 2015. The effect of body condition score at calving on milk yield, milk composition and udder health status of dairy animals. Journal of Dairy, Veterinary and Animal Research. Vol. 2, pp: 47-50.
17
Steeneveld, W.; Hogeveen, H.; Barkema, H.W.; van den Broek, J. and Huirne, R.B., 2008. The influence of cow factors on the incidence of clinical mastitis in dairy cows. Journal of dairy science. Vol. 91, pp: 1391-1402.
18
Suriyasathaporn, W.; Heuer, C.; Noordhuizen-Stassen, E.N. and Schukken, Y.H., 2003. Hyperketonemia and the impairment of udder defense: a review. Veterinary research. Vol. 31, pp: 397-412.
19
Trajcev, M. and Nakov, D., 2009. Mastitis control program in dairy herds. Yearbook of the Faculty of agricultural science and food. Vol. 54, pp: 123-140.
20
Verhoeff, J.; Van de Geer, D. and Hagens, F., 1981. Effects of a mastitis control programme on the incidence of clinical mastitis. Veterinary Quarterly. Vol. 3, pp: 158-208.
21
Wankhade, P.R.; Manimaran, R.; Kumaresan, A.; Jeyakumar, S.; Ramesha, K.P.; Sejian, V.; Rajendran, D. and Varghese, M.R., 2017. Metabolic and immunological changes in transition dairy cows (A review). Vet World. Vol. 10, No. 11, pp: 1367-1377.
22
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثرات افزودن لاکتوباسیلوس ال بوچنری به جیره غذایی گاو شیری آلوده به آفلاتوکسین B1 بر فراسنجه های تولید گاز در شرایط آزمایشگاهی
آفلاتوکسین B1 توسط قارچ های آسپرژیلوس فلاووس و پارازیتیکوس تولید و میزان حرکات شکمبه و تجزیه پذیری مواد خوراکی در آن تحت تاثیر قرار می دهد. هدف از این مطالعه بررسی کاهش اثرات سوء آفلاتوکسین B1 بر تخمیر شکمبه ای در حضور افزودنی لاکتوباسیلوس البوچنری در شرایط آزمایشگاهی بود. تیمارهای آزمایشی شامل: جیره پایه (شاهد)، جیره پایه همراه با 0/5 و 1 میکروگرم بر میلی لیتر آفلاتوکسین B1 و جیره غذایی پایه آلوده با آفلاتوکسین B1 (یک میکروگرم در میلی لیتر) به همراه سطوح مختلف افزودنی لاکتوباسیلوس البوچنری به ترتیب 0/01، 0/1 و 0/2 نانوگرم در کیلوگرم جیره غذایی بودند. میزان گاز تولیدی در 4 ،6 ،8 ،12 ،24 ،36، 48، 72، 96 و 120 ساعت بعد از عمل انکوباسیون ثبت شد. داده های به دست آمده در یک طرح آماری کاملاً تصادفی با 3 تکرار آنالیز گردید. نتایج نشان داد سم آفلاتوکسین B1 سبب تغییر در تخمیر شکمبه و کاهش حجم گاز تولیدی (429 میلی لیتر به ازای گرم ماده خشک) در مقایسه با گروه شاهد (382 میلی لیتر به ازای گرم ماده خشک) شد (0/05>P). در پایان 120 ساعت انکوباسیون بیش ترین گاز تولیدی مربوط به تیمار شاهد و کم ترین گاز تولیدی مربوط به تیمار دریافت کننده 0/2 نانوگرم لاکتوباسیلوس ال بوچنری بود (0/05>P). افزودن لاکتوباسیلوس البوچنری سبب افزایش فراسنجه های تخمینی شامل انرژی متابولیسم، انرژی خالص و قابلیت هضم ماده آلی شد (0/05>P). هم چنین افزودن سطوح 0/01، 0/1 و 0/2 نانوگرم ال بوچنری به جیره آلوده به آفلاتوکسین B1 به طور معنی داری سبب کاهش pH در شرایط آزمایشگاهی گردید (0/05>P). نتایج نشان داد لاکتوباسیلسوس ال بوچنری سبب افزایش قابلیت هضم شکمبه شد و توانایی مهار آلودگی آفلاتوکسین B1 در جیره گاوهای شیری را در شرایط برون تنی دارد.
http://www.aejournal.ir/article_105886_c912a07302e36998e18c65d3f614282d.pdf
2020-06-21
37
44
10.22034/aej.2020.105886
آفلاتوکسین B1
لاکتوباسیلوس ال بوچنری
تولید گاز
ذبیح اله
نعمتی
znnemati@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تبریز، اهر، ایران
LEAD_AUTHOR
مقصود
بشارتی
m_besharati@hotmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تبریز، اهر، ایران
AUTHOR
نعمتی، ذ.؛ جانمحمدی، ح.غ.؛ تقی زاده، ا.؛ ملکی نژاد، ح. و مقدم، غ.، 1394. تاثیر جاذب طبیعی بنتونیت در کاهش اثرات منفی آفلاتوکسین B1 بر عملکرد و سیستم ایمنی در جوجه های گوشتی. تحقیقات تولیدات دامی. سال 4، شماره 3، صفحات 67 تا 77.
1
Ali, A.A. and Mustafa, M.M., 2009. Use of starter cultures of lactic acid bacteria and yeasts in the preparation of kisra, a Sudanese fermented food. Pakistan Journal of Nutrition. Vol. 8, pp: 1349-1353.
2
Bang, Y.J.; Kang, Y.K.; Kang, W.K.; Boku, N.; Chung, H.C.; Chen, J.S.; Doi, T.; Sun, Y.; Shen, L. and Qin, S., 2011. Phase II study of sunitinib as second-line treatment for advanced gastric cancer. Investigational new drugs. Vol. 29, pp: 1449-1458.
3
Bhat, R.; Rai, R.V. and Karim, A.A., 2010. Mycotoxins in food and feed: present status and future concerns. Comprehensive reviews in food science food safety. Vol. 9, pp: 57-81.
4
Chen, Y.; Kong, Q.; Chi, C.; Shan, S. and Guan, B., 2015. Biotransformation of aflatoxin B 1 and aflatoxin G 1 in peanut meal by anaerobic solid fermentation of Streptococcus thermophilus and Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus. International journal of food microbiology. Vol. 211, pp: 1-5.
5
Ciegler, A.; Lillehoj, E.; Peterson, R. and Hall, H., 1966. Microbial detoxification of aflatoxin. Applied microbiology. Vol. 14, pp: 934-939.
6
Dalié, D.; Deschamps, A. and Richard-Forget, F., 2010. Lactic acid bacteria, Potential for control of mould growth and mycotoxins: A review. Food control. Vol. 21, pp: 370-380.
7
El-Deeb, B.; Altalhi, A.; Khiralla, G.; Hassan, S. and Gherbawy, Y., 2013. Isolation and characterization of endophytic Bacilli bacterium from maize grains able to detoxify aflatoxin B1. Food biotechnology. Vol. 27, pp: 199-212.
8
Farzaneh, M.; Shi, Z.Q.; Ghassempour, A.; Sedaghat, N.; Ahmadzadeh, M.; Mirabolfathy, M. and Javan-Nikkhah, M., 2012. Aflatoxin B1 degradation by Bacillus subtilis UTBSP1 isolated from pistachio nuts of Iran. Food control. Vol. 23, pp: 100-106.
9
Fedorah, P.M. and Hrudey, S.E., 1983. A simple apparatus for measuring gas production by methanogenic cultures in serum bottles. Environmental Technology. Vol. 4, pp: 425-432.
10
Fink-Gremmels, J., 2008. Mycotoxins in cattle feeds and carry-over to dairy milk: a review. Food Additives Contaminants. Vol. 25, pp: 172-180.
11
Gálvez, A.; Abriouel, H.; López, R.L. and Omar, N.B., 2007. Bacteriocin-based strategies for food biopreservation. International journal of food microbiology. Vol. 120, pp: 51-70.
12
Gerbaldo, G.A.; Barberis, C.; Pascual, L.; Dalcero, A. and Barberis, L., 2012. Antifungal activity of two Lactobacillus strains with potential probiotic properties. FEMS microbiology letters. Vol. 332, pp: 27-33.
13
Guan, R.; Wang, Q.; Sundberg, E.J. and Mariuzza, R.A., 2005. Crystal structure of human peptidoglycan recognition protein S (PGRP-S) at 1.70 Å resolution. Journal of molecular biology. Vol. 347, pp: 683-691.
14
Huang, L.; Duan, C.; Zhao, Y.; Gao, L.; Niu, C.; Xu, J. and Li, S., 2017. Reduction of aflatoxin B1 toxicity by Lactobacillus plantarum C88: a potential probiotic strain isolated from Chinese traditional fermented food “Tofu”. Plos one. Vol. 12: e0170109.
15
IARC. 2002. Some traditional herbal medicines, some mycotoxins, naphthalene and styrene, World Health Organization.
16
Jaimez, J.; Fente, C.; Vazquez, B.; Franco, C.; Cepeda, A.; Mahuzier, G. and Prognon, P., 2000. Application of the assay of aflatoxins by liquid chromatography with fluorescence detection in food analysis. Journal of Chromatography A. Vol. 882, pp: 1-10.
17
Jiang, Y.H.; Wang, P.; Yang, H.J. and Chen, Y., 2014. The efficacy of bamboo charcoal in comparison with smectite to reduce the detrimental effect of aflatoxin B1 on in vitro rumen fermentation of a hay-rich feed mixture. Toxins. Vol. 6, pp: 2008-2023.
18
Jiang, Y.; Yang, H. and Lund, P., 2012. Effect of aflatoxin B1 on in vitro ruminal fermentation of rations high in alfalfa hay or ryegrass hay. Animal feed science technology. Vol. 175, pp: 85-89.
19
Karimi, D.A.; Tajabadi, E.M.; Sharifan, A.; Nikoopour, H. and Hashemi, M., 2012. Binding ability of some iranian native lactobacillus spp. to aflatoxin m1. Journal of microbial biotechnology.
20
Kasmani Bagherzadeh, F.; Torshizi, K.; Allameh, A. and Shariatmadari, F., 2012. Aflatoxin detoxification potential of lactic acid bacteria isolated from Iranian poultry. Iranian Journal of Veterinary Research. Vol. 13, pp: 152-155.
21
Khanafari, A.; Soudi, H. and Miraboulfathi, M., 2007. Biocontrol of Aspergillus flavus and aflatoxin B1 production in corn. Iranian Journal of Environmental Health, Science Engineering. Vol. 4, pp: 163-168.
22
Littell, R.C.; Stroup, W.W. and Freund, R.J., 2002. SAS for linear models, SAS institute.
23
Magnusson, J. and Schnürer, J., 2001. Lactobacillus coryniformis subsp. coryniformis strain Si3 produces a broad spectrum proteinaceous antifungal compound. Applied Environmental Microbiology. Vol. 67, pp: 1-5.
24
Menke, K.; Raab, L.; Salewski, A.; Steingass, H.; Fritz, D. and Schneider, W., 1979. The estimation of the digestibility and metabolizable energy content of ruminant feedingstuffs from the gas production when they are incubated with rumen liquor in vitro. The Journal of Agricultural Science. Vol. 93, pp: 217-222.
25
Moschini, M.; Gallo, A.; Piva, G. and Masoero, F., 2008. The effects of rumen fluid on the in vitro aflatoxin binding capacity of different sequestering agents and in vivo release of the sequestered toxin. Animal Feed Science Technology. Vol. 147, pp: 292-309.
26
Nemati, Z.; Karimi, A. and Besharati, M., 2015. Published. Impact of Aflatoxin Contaminated Feed and Yeast Cell Wall Supplementation on Immune System in Broiler Chickens, pp. 8-9. In, Proceedings of International Conference on Innovations in Chemical & Agricultural Engineering.
27
Oliveira, P.M.; Zannini, E. and Arendt, E.K., 2014. Cereal fungal infection, mycotoxins, and lactic acid bacteria mediated bioprotection: from crop farming to cereal products. Food microbiology. Vol. 37, pp: 78-95.
28
Peltonen, K.; El-Nezami, H.; Haskard, C.; Ahokas, J. and Salminen, S., 2001. Aflatoxin B1 binding by dairy strains of lactic acid bacteria and bifidobacteria. Journal of dairy science. Vol. 84, pp: 2152-2156.
29
Roger, T. and Léopold, T.N., 2015. Effect of selected lactic acid bacteria on growth of Aspergillus flavus and aflatoxin B 1 production in kutukutu. Journal of Microbiology Research. Vol. 5, pp: 84-94.
30
Sangi, F.; Mohammadi, A.; Afzali, N. and Mirabolfathy, M., 2018. Identification of New Aflatoxin B1-Degrading Bacteria from Iran. Iranian Journal of Toxicology. Vol. 12, No. 3, pp: 39-44.
31
Schollenberger, M.; Müller, H.M.; Rüfle, M.; Suchy, S.; Plank, S. and Drochner, W., 2006. Natural occurrence of 16 Fusarium toxins in grains and feedstuffs of plant origin from Germany. Mycopathologia. Vol. 161, pp: 43-52.
32
Shetty, P.H. and Jespersen, L., 2006. Saccharomyces cerevisiae and lactic acid bacteria as potential mycotoxin decontaminating agents. Trends in Food Science. Vol. 17, pp: 48-55.
33
Thiel, P.; Stockenström, S. and Gathercole, P., 1986. Aflatoxin analysis by reverse phase HPLC using post-column derivatization for enhancement of fluorescence. Journal of liquid chromatography. Vol. 9, pp: 103-112.
34
Verheecke, C.; Liboz, T. and Mathieu, F., 2016. Microbial degradation of aflatoxin B1: current status and future advances. International journal of food microbiology. Vol. 237, pp: 1-9.
35
Wang, F.; Xie, F.; Xue, X.; Wang, Z.; Fan, B. and Ha, Y., 2011. Structure elucidation and toxicity analyses of the radiolytic products of aflatoxin B1 in methanol, water solution. Journal of hazardous materials. Vol. 192, pp: 1192-1202.
36
Wild, C.P. and Montesano, R., 2009. A model of interaction: aflatoxins and hepatitis viruses in liver cancer aetiology and prevention. Cancer letters. Vol. 286, pp: 22-28.
37
Wu, Q.; Jezkova, A.; Yuan, Z.; Pavlikova, L.; Dohnal, V. and Kuca, K., 2009. Biological degradation of aflatoxins. Drug Metabolism Reviews. Vol. 41, pp: 1-7.
38
Yao, A.; Egounlety, M.; Kouame, L. and Thonart, P.J.A.M.V., 2009. Les bactéries lactiques dans les aliments ou boissons amylacés et fermentés de l’Afrique de l’Ouest: leur utilisation actuelle. Vol. 153, pp: 54-65.
39
ORIGINAL_ARTICLE
برآورد ارزش غذایی دانههای گندم و جو با روش تولید گاز آزمایشگاهی با استفاده از دو منبع میکروارگانیسم شیرابه شکمبه و سوسپانسیون مدفوع گوسفند قزل
هدف از این مطالعه بررسی امکان جایگزینی سوسپانسیون مدفوع با شیرابه شکمبه در روش تولید گاز آزمایشگاهی برای برآورد ارزش غذایی دانه های گندم و جو برای نشخوارکنندگان است. برای انجام آزمایش تولید گاز آزمایشگاهی با استفاده از شیرابه شکمبه، مایع شکمبه از سه رأس گوسفند کانوله دار و برای انجام آزمایش مشابه با استفاده از سوسپانسیون مدفوع، مدفوع تازه از همان حیوانات دریافت شد. نتایج نشان داد از نظر تولید گاز آزمایشگاهی بین دو روش استفاده از شیرابه شکمبه و سوسپانسیون مدفوع در زمانهای مختلف انکوباسیون در مواد خوراکی آزمایشی، تفاوت معنی داری وجود نداشت. هم چنین اختلاف معنی داری از نظر فراسنجه A (حجم گاز حاصل از بخش قابل تخمیر) و ارزش غذایی برآورد شده بین دو روش مورد آزمایش وجود نداشت، ولی ثابت نرخ تولید گاز (c) به دست آمده از روش استفاده از مدفوع به طور معنی دار بیش تر از روش شیرابه شکمبه بود. با توجه به معادلات رگرسیون به دست آمده می توان با استفاده از سوسپانسیون مدفوع به عنوان منبع میکروارگانیسم مقدار گاز تولیدی در روش شیرابه شکمبه را برآورد کرد که این معادلات برای دانه گندم Y=-3.8751+1.0052X و برای دانه جو Y=-1.7172+1.0367X می باشد. هم چنین اختلاف معنی داری در مقادیر انرژی قابل متابولیسم، انرژی خالص شیردهی، قابلیت هضم مادهآلی و اسیدهای چرب زنجیر کوتاه برآورد شده از روی مقدار تولید گاز آزمایشگاهی با استفاده از شیرابه شکمبه و سوسپانسیون مدفوع مشاهده نشد. در مجموع به نظر می رسد سوسپانسیون مدفوع جایگزین مناسبی برای شیرابه شکمبه در روش تولید گاز آزمایشگاهی برای ارزشیابی مواد خوراکی برای نشخوارکنندگان باشد.
http://www.aejournal.ir/article_105888_2c856b0299547e9f763c995efeb9665d.pdf
2020-06-21
45
52
10.22034/aej.2020.105888
شیرابه شکمبه
سوسپانسیون مدفوع
تولید گاز آزمایشگاهی
انرژی قابل متابولیسم
ابوالفضل
آقاجانزاده گلشنی
aaghajanzadeh50@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و دامپزشکی، واحد شبستر، دانشگاه آزاد اسلامی، شبستر، ایران
LEAD_AUTHOR
ناصر
ماهری سیس
nama1349@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و دامپزشکی، واحد شبستر، دانشگاه آزاد اسلامی، شبستر، ایران
AUTHOR
رامین
سلامت دوست نوبر
r.salamatdoust@gmail.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و دامپزشکی، واحد شبستر، دانشگاه آزاد اسلامی، شبستر، ایران
AUTHOR
یحیی
ابراهیم نژاد
ebrahimnezhad@gmail.com
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و دامپزشکی، واحد شبستر، دانشگاه آزاد اسلامی، شبستر، ایران
AUTHOR
ابوالفضل
قربانی
abolfazlgorbani@gmail.com
5
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و دامپزشکی، واحد شبستر، دانشگاه آزاد اسلامی، شبستر، ایران
AUTHOR
پرند، ا. و تقی زاده، ا.، 1389. بررسی قابلیت هضم دانه جو فرآوری شده با روشهای مختلف با استفاده از روش تولید گاز و دو منبع آنزیم میکروبی. پژوهش های علوم دامی. سال 2، جلد 4، شماره 20، صفحات 1 تا 13.
1
سمیعی زفرقندی، م.؛ قورچی، ت. وآهنی آذری، م.، 1389. تعیین اثرات فرآوری شیمیایی دو رقم جو بر ناپدیدشدن شکمبه ای ماده خشک، نشاسته و بخش های کربوهیدرات سیستم کربوهیدرات و پروتئین خالص کرنل (CNCPS). مجله علوم دامی ایران. دوره 41، شماره 1، صفحات 21 تا 32.
2
نیکخواه، ع. و مهدوی، ع.، 1385. مقایسه روش کیسه های نایلونی (situ in) و روش آزمون گاز در تعیین ارزش غذایی مواد خوراکی. مجله علوم کشاورزی ایران. جلد ٣٧، شماره ٢، صفحات 281 تا 292.
3
Aghajanzadeh-Golshani, A.; Maheri-Sis, N.; Salamat Doust-Nobar, R.; Ebrahimnezhad, Y. and Ghorban, A., 2015. Developing a modified in vitro gas production technique to replace the nylon bag method of evaluating protein degradation of alfalfa hay in ruminants.Iranian Journal of Applied Animal Science.Vol. 5, No. 2, pp: 339-345.
4
AOAC. 1990. Official methods of analysis. Association of official analytical chemists. Virginia, USA: AOAC.
5
Balfe, B., 1985. The development of a two-stage technique for the in vitro digestion of hay using ovine faeces (instead of rumen liquor) as a source of microorganisms. BSc (Hons) dissertation. University of Wales, Bangor.
6
Chen, X. B., 1995. Fitcurve macro, IFRU, The Macaulay Institute, Aberdeen, UK.
7
Cone, J.W.; van Gelder, A.H. and Bachmann, H., 2002. Influence of inoculum source on gas production profiles. Animal Feed Science and Technology. Vol. 99, pp: 221-231.
8
Cutrignelli, M.I.; Calabro, S.; Tudisco, R.; Zicarelli, F.; Gazaneo, M.P. and Piccolo, V., 2005. Comparison of buffalo rumen liquor and buffalo faeces as inoculum for the in vitro gas production technique. Italian Journal of Animal Science. Vol. 4, No. 2, pp: 319-321.
9
El Shaer, H.M.; Omed, H.M.; Chamberlain, A.G. and Axford, R.F.E., 1987. Use of faecal organisms from sheep for the in vitro determination of digestibility. The Journal of Agricultural Science.Vol. 109, pp: 257-259.
10
Gençoglu, H.; Biricik, H.; Kara, Ç. and Türkmen, İ.İ., 2011. In situ ruminal crude protein and starch degradability of some grains and by-product feeds in Turkey. Journal of Biological & Environmental Sciences. Vol. 5, No. 15, pp: 203-206.
11
Jahani-Azizabadi, H.; Danesh Mesgaran, M.; Valizadeh, R. and Nasiri Moghadam, H., 2009. Comparison of in vivo with in situ mobile bag and three step enzymatic procedures to evaluate protein disappearance of alfalfa hay and barley grain. Iranian Journal of Veterinary Research.Vol. 10, No. 3, pp: 260-266.
12
Koehler, P. and Wieser, H., 2013. Chemistry of cereal grains. In: Handbook on sourdough biotechnology. Springer New York Heidelberg Dordrecht London. pp: 11-45.
13
Madsen, J.; Hvelplund, T. and Weisbjerg, M.R., 1997. Appropriat methods for the evaluation of tropical feeds for ruminats. Animal Feed Science and Technology. Vol. 69, pp: 53-66.
14
Makkar, H.P.S., 2005. In vitro gas methods for evaluation of feeds containing phytochemicals. Animal Feed Science and Technology. Vol. 123-124, pp: 291-302.
15
Mauricio, R.M.; Owen, E.; Mould, F.L.; Givens, I.; Theodorou, M.K.; France, J.; Davies, D.R. and Dhanoa, M.S., 2001. Comparison of bovine rumen liquor and bovine faeces as inoculum for an in vitro gas production technique for evaluating forages. Animal Feed Science and Technology. Vol. 89, pp: 33-48.
16
Menke, K.H.; Raab, L.; Salewski, A.; Steingass, H.; Fritz, D. and Schneider, W., 1979. The estimation of digestibility and metabolisable energy content of ruminant feedstuffs from the gas production when they incubated with rumen liquor in vitro. The Journal of Agricultural Science. Vol. 93, pp: 217-222.
17
Menke, K.H. and Steingass, H., 1988. Estimation of energetic feed value obtained from chemical analysis and in vitro production using rumen fluid. Animal Research Development. Vol. 28, pp: 7-55.
18
Mohammadian-Tabrizi, H.R.; Sadeghipanah, H.; Chamani, M.; Ebrahim Nejad, Y. and Fazaeli. H., 2011. In vitro gas production of wheat grain flour coated with different fat types and levels. African Journal of Biotechnology. Vol. 10, No. 39, pp: 7710-7716.
19
National Research Council (NRC). 2001. Nutrient requirements of dairy cattle. 7th revised edition. National Academy of Science. Washington, DC.
20
Orskov, E.R. and McDonald, I., 1979. The estimation of protein degradability in the rumen from incubation measurement weight according to rate of passage. Journal of Agricultural Science. Vol. 92, pp: 499-503.
21
Parnian, F.; Taghizadeh, A. and Nobari. B.B., 2013. Use of in vitro gas production technique to evaluate the effects of microwave irradiation on sorghum (Sorghum bicolor) and wheat (Triticum sp.) nutritive values and fermentation characteristics. Journal of Bioscience and Biotechnology. Vol. 2, No. 2, pp: 125-130.
22
SAS. 2001. SAS for Windows Version 8.02, SAS Institute Inc., Cary, NC, USA.
23
Solangi, A.A., 1997. Studies on the use of faecal organisms in the in vitro assessment of forages. PhD thesis, University of Wales, Bangor, UK.
24
Taghizadeh, A. and Nemati, Z., 2008. Degradability characteristics of treated and untreated barley grain using in situ technique. American Journal of Animal and Veterinary Sciences. Vol. 3, No. 2, pp: 53-56.
25
V´aradyov´a, Z.; Baran, M. and Zeleˇn´ak, I., 2005. Comparison of two in vitro fermentation gas production methods using both rumen fluid and faecal inoculum from sheep. Animal Feed Science and Technology. Vol. 123-124, pp: 81-94.
26
Van Soest, P.J.; Robertson, J.B. and Lewis, B.A., 1991. Methods for dietary fiber, neutral detergent fiber, and nonstarch polysaccharides in relation to animal nutrition. Journal of Dairy Science. Vol. 74, pp: 3583-3597.
27
Zhao, G.Y. and Chen, X.J., 2004. The suitability of a faecal suspension of sheep as inocula for the estimation of utilizable crude protein of feeds by in vitro incubation. Archives of Animal Nutrition. Vol. 58, No. 2, pp: 137-148.
28
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین ارزش تغذیه ای ضایعات چای سبز و سیاه در تغذیه نشخوارکنندگان با استفاده از روش آزمایشگاهی تولید گاز
هدف از انجام تحقیق، تعیین ترکیبات شیمیایی و ترکیبات فنولی ضایعات چای سبز و سیاه و برآورد انرژی قابل متابولیسم و انرژی ویژه شیردهی با استفاده از روش آزمایشگاهی تولید گاز بود. این تحقیق در قالب طرح کامل تصادفی با سه تیمار ضایعات چای سبز، ضایعات چای سیاه و یونجه، اجرا و داده های حاصل با نرم افزار (SAS (1/9 مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت. مقادیر پروتئین خام، خاکستر خام، عصاره اتری، دیواره سلولی نامحلول در شوینده خنثی و دیواره سلولی نامحلول در شوینده اسیدی در ضایعات چای سبز به ترتیب: 13/7، 3/7، 2، 44/6 و 31/7 درصد ماده خشک و در ضایعات چای سیاه به ترتیب: 14/8، 4/7، 2/4، 39/6 و 27/1 درصد ماده خشک بود. مقدار کل ترکیبات فنولی و تانن قابل استخراج برای ضایعات چای سبز به ترتیب 20/3 و 18/7 درصد ماده خشک و برای ضایعات چای سیاه 18/7 و 12/7 درصد ماده خشک بود. 96 ساعت پس از انکوباسیون ضایعات چای سیاه بیش ترین و یونجه کم ترین میزان گاز تولیدی را به خود اختصاص دادند (0/05>p). پتانسیل تولید گاز ضایعات چای سبز، سیاه و یونجه به ترتیب 284/2، 294 و 261/9 میلی لیتر گاز به ازای هر گرم ماده خشک به دست آمد. نرخ تولید گاز ضایعات چای سبز، سیاه و یونجه به ترتیب 0/074، 0/074 و 0/072 در ساعت بود. بیش ترین میزان انرژی قابل متابولیسم و انرژی ویژه شیردهی مربوط به ضایعات چای سیاه (به ترتیب 9/45 و 5/77 مگاژول در کیلوگرم ماده خشک) بود. نتایج نشان داد ضایعات چای سبز و سیاه دارای ارزش تغذیه ای بالاتری از یونجه اواخر گل دهی بوده و بنابراین می توان به عنوان بخشی از جیره نشخوارکنندگان از آن استفاده کرد.
http://www.aejournal.ir/article_105674_8d1eddc7e38a0302af306158a8ee6d40.pdf
2020-06-21
53
60
10.22034/aej.2020.105674
ضایعات چای سبز و سیاه
ترکیبات شیمیایی
ترکیبات فنولی
نشخوارکنندگان
نازک
شکرانی قشلاق
nazakshokrani373@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
AUTHOR
حمید
پایا
hamid.paya@tabrizu.ac.ir
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
LEAD_AUTHOR
اکبر
تقی زاده
taghizadeh@tabrizu.ac.ir
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
AUTHOR
حمید
محمدزاده
hamidmhz@tabrizu.ac.ir
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز، تبریز، ایران
AUTHOR
پارسا، ف.؛ محبیان، ص.؛ آزادی، ر. و شکرگزار، د.، ۱۳۸۸. بررسی و اندازه گیری مواد مهم تشکیل دهنده ضایعات کارخانه های چای، ششمین کنگره علوم باغبانی ایران، رشت، دانشگاه گیلان.
1
پایا، ح. و تقی زاده، ا.، 1397. تأثیر لازالوسید بر اکوسیستم و پارامترهای شکمبه ای گوسفند قزل. فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری. جلد 10، شماره 3، صفحات 53 تا 58.
2
تقی زاده، ا.؛ جان محمدی، ح. و بشارتی، م.، 1391. تعیین خصوصیات تجزیه پذیری و تخمیری برخی مواد غذایی با استفاده از روش کیسه های نایلونی و آزمایشگاهی. نشریه پژوهش های علوم دامی ایران. جلد 22، شماره 4، صفحات 1 تا 16.
3
توفیقی، ح.؛ افضل زاده، ا. و فضائلی، ح.، 1382. بررسی ارزش غذایی ضایعات برگ چای در تغذیه دام. مجله کشاورزی. جلد 5، شماره 1، صفحات 21 تا 29.
4
رزم آذر، و.؛ تربتی نژاد، ن.م.؛ سیف دواتی، ج. و زره داران، س.، 1395. تأثیر ارقام مختلف پوست انار بر قابلیت هضم ماده خشک، جمعیت پروتوزوآ و تولید گاز متان به روش آزمایشگاهی. نشریه پژوهش در نشخوارکنندگان. جلد 4، شماره 2، صفحات 111 تا 132.
5
ناصحی، م.؛ تربتی نژاد، ن.م.؛ رضایی، م. و قورچی، ت.، 1396. اثر سطوح مختلف چای سبز برافزایش وزن، قابلیت هضم مواد مغذی و ابقای نیتروژن در بره های پرواری. نشریه پژوهش های علوم دامی (پژوهش و سازندگی). شماره 120، صفحات 71 تا 88.
6
صحرایی، م.؛ اسدزاده، ن. و ابرغانی، ا.، 1397. تاثیر روش های مختلف تغذیه کمکی بر عملکرد بره های مغانی در زیستگاه بومی آن. فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری. جلد 10، شماره 3، صفحات 47 تا 52.
7
Anesini, C.; Ferraro, G.E. and Filip, R., 2008. Total polyphenol content and antioxidant capacity of commercially available tea (Camellia sinensis) in Argentina. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 26, pp: 9225-9229.
8
Animut, G.; Puchala, R.; Goetsch, A.L.; Patra, A.K.; Sahlu, T.; Varel, V.H. and Wells, J., 2008. Methane emission by goats consuming diets with different levels of condensed tannins from lespedeza. Journal of Animal Feed Science and Technology. Vol. 144, pp: 212-227.
9
AOAC. 2005. Official Methods of Analysis of AOAC international. AOAC international. Maryland. USA.
10
Bodas, R.; Prieto, N.; García-González, R.; Andrés, S.; Giráldez, F.J. and López, S., 2012. Manipulation of rumen fermentation and methane production with plant secondary metabolites. Journal of Animal Feed Science and Technology. Vol. 176, pp: 78-93.
11
Fedorak, P.M. and Hrudey. S.E., 1983. A Simple apparatus for measuring gas production by methanogenic cultuvesin serum bottles. Environmental Technology Letters. Vol. 4, pp: 425-435.
12
Frutos, P.; Hervas, G.; Giraldez, F.J. and Mantecon, A.R., 2004. Review. Tannins and ruminant nutrition. Spanish Jornal of Agricaltural Reserch. Vol. 2, pp: 191-202.
13
Getachew, G.; Makkar, H.P.S. and Becker, K., 2002. Tropical browses: contents of phenolic compounds, in vitro gas production and stoichiometric relationship between short chain fatty acid and in vitro gas production. The Journal of Agricultural Science. Vol. 139, pp: 341-352.
14
Kondo, M.; Nakano, M.; Kaneko, A.; Agata, H.; Kita, K. and Yokota, H., 2004. Ensiled green tea waste as partial replacement for soybean meal and alfalfa hay in lactating cows. Asian Australasian Journal of Animal Sciences. Vol. 17, pp: 960-966.
15
Makkar, H.P.S., 2000. Quantification of tannins in tree forage foliage: Laboratory manual for the FAO/IAEA co-ordinated research project on “use of nuclear and related techniques to develop simple tannin assays for predicting and improving the safety and efficiency of feeding ruminants on tanniferous tree foliage.” Joint FAO/IAEA Division of Nuclear Techniques in Food and Agriculture. Animal Production and Health Sub-Programme. IAEA Working Document IAEA, Vienna.
16
McDougall, E.I., 1948. The composition and output of sheep in saliva. Biochemical journal. Vol. 43, pp: 99-109.
17
Menke, K.H. and Steingass, H., 1988. Estimation of the energetic feed value obtained from chemical analysis and in vitro gas production using rumen fluid. Animal research and development. Vol. 28, pp: 7-55.
18
Menke, K.H.; Raab, L.; Salewski, A.; Steingass, H.; Fritz, D. and Schneider, W., 1979. The estimation of the digestibility and metabolizable energy content of ruminant feedingstuffs from the gas production when they are incubated with rumen liquor in vitro. The Journal of Agricultural Science. Vol. 93, pp: 217-222.
19
Nasehi, M.; Torbatinejad, N.M.; Rezaie, M. and Ghoorchi, T., 2017. Effect of polyethylene glycol addition on nutritive value of green and black tea co-products in ruminant nutrition. Asian Journal of Animal and Veterinary Advances. Vol. 12, pp: 254-260.
20
NRC. 2001. Nutrient Requirements of Dairy Cattle. 7th revise edition. National Academies Press, Washington, DC.
21
Ørskov, E. and McDonald, I., 1979. The estimation of protein degradability in the rumen from incubation measurements weighted according to rate of passage. The Journal of Agricultural Science. Vol. 92, pp: 499-503.
22
Paya, H.; Taghizadeh, A.; Janamohamadi, H. and Moghadam, G.A., 2008. Ruminal dry matter and crude protein degradability of some tropical (Iranian) feeds used in ruminant diets estimated using the in situ and in vitro techniques. Research Journal of Biological Sciences. Vol. 7, pp: 720-725.
23
Ramdani, D.; Chaudhry, A.S. and Seal, C.J., 2013. Chemical composition plants secondary metabolites and minerals of green and black teas and the effect of different tea-to-water ratio during their extraction on the composition of their spent leaves as potential additives for ruminants. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 61, pp: 4961-4967.
24
Van Soest, P.J.; Robertson, J.B. and Lewis, B.A., 1991. Method for dietary fiber, neutral detergent fiber, and nonstarch polysaccharides in relation to animal nutrition. Journal of Dairy science. Vol. 74, pp: 3583-3597.
25
Yamamoto, T.; Juneja, L.R.; Chu, D.C. and Kim, M., 1997. Chemistry and applications of green tea, CRC press. Florida, USA.
26
ORIGINAL_ARTICLE
اثر حفاظتی عصاره هیدروالکلی میوه تمشک (Rubus fruticosus L) بر سطح سرمی لیپیدهای خون در موش های صحرایی نر دیابتیک القا شده با STZ
کاهش میزان گلوکز و لیپیدهای نامطلوب سرم در بیماران دیابتی دارای اهمیت است. دراین مطالعه تاثیر عصاره هیدروالکلی میوه تمشک (Rubus fruticosus L) و میزان لیپیدهای خون در رت های دیابتی شده با استرپتوزوتوسین مورد بررسی قرار گرفت. 50 سر موش نر نژاد ویستار با وزن 20±200 گرم به 5 گروه مساوی تقسیم شدند. گروه شاهد ، گروه شاهد دیابتی شده و 3 گروه تجربی دیابتی شده که عصاره هیدروالکلی میوه تمشک را با دوزهای 50 میلی گرم/کیلوگرم، 100 میلی گرم/کیلوگرم و 200 میلی گرم/کیلوگرم دریافت کردند. برای القا دیابت استرپتوزوتوسین (55 میلی گرم/کیلوگرم) به صورت ip تزریق و بعد از 4 هفته نمونه خونی تهیه شد و داده ها با نرم افزار spss مورد تحلیل آماری قرار گرفت. سطح سرمی کلسترول تام،LDL و تری گلیسرید سرم در گروه دیابتی نسبت به گروه شاهد افزایش معنی داری یافت (p<0.05),(P<0/01) و (P<0/001). اما سطح سرمی HDL در گروه دیابتی نسبت به گروه شاهد کاهش داشت (P<0/05) و سطح سرمی کلسترول تام، LDL و تری گلیسیرید در گروه دیابتی دریافت کننده عصاره هیدروالکلی تمشک کاهش معنی داری نسبت به گروه دیابتی داشته است (p<0.05),(P<0/01) و (P<0/001). سطح سرمی HDL در گروه دیابتی دریافت کننده عصاره هیدروالکلی تمشک افزایش معنی داری نسبـت به گروه دیابتی نشان داد (0/05>P) و (0/01>P). دیابت موجب افزایش چربی های خطرساز در سرم خون رت ها می گردد. عصاره هیدروالکلی تمشک به دلیل دارا بودن ترکیبات آنتی اکسیدانی اثرات سودمندی بر لیپیدهای نامطلوب سرم دارد.
http://www.aejournal.ir/article_105980_687db1ce3edac06758a2d249859af894.pdf
2020-06-21
61
66
10.22034/aej.2020.105980
تمشک
دیابت
رت
لیپیدهای سرم
محیا
سهیلی فر
mahya.soheilifar@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران
AUTHOR
عبدالحسین
شیروی
shiravi738@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران
LEAD_AUTHOR
ناصر
میرازی
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه بوعلی سینا، همدان، ایران
AUTHOR
ویدا
حجتی
vida.hojati@gmail.com
4
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران
AUTHOR
رقیه
عباسعلی پورکبیره
5
گروه بیوشیمی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی و خدمات درمانی همدان، همدان، ایران
AUTHOR
Abdu, D.A. and Majeed, S.N., 2012. Identification of antioxidant compounds in red raspberry (Rubus idaeus) fruit in kurdistan region (North Iraq). J Appl Chem. Vol. 2, No. 3, pp: 6-10.
1
Arayne, M.S.; Sultana, N. and SherBahadur, S., 2007. The berberis story: Berberis vulgaris in therapeutics. Pak J Sci. Vol. 20, No. 1, pp: 83-92.
2
Armstrong, D. and al-Awadi, F., 1991. Lipid Peroxidation and Retinopathy in Streptozotocin-Induced Diabetes. Free Radic BiolMed. Vol. 11, No. 4, pp:433-436.
3
Boivin, D.; Blanchette, M.; Barrette, S.; Moghrabi, A. and Beliveau, R., 2007. Inhibition of cancer cell proliferation and suppression of TNF-induced activation of NFkB by edible berry juice. Anticancer Research. Vol. 27, pp: 937-948.
4
Bonnefont, R.D., 2004. The role of antioxidant micronutrients in the prevention of diabetic complications. Treatment in endocrinology. Vol. 3, pp: 41-52.
5
Bose, K.S. and Agrawal, B.K., 2007. Effect of lycopene from tomatoes cooked on plasma antioxidant enzymes, lipid peroxidation rate and lipid profile in Grade-I hypertension. Ann Nutr Metab. Vol. 44, pp: 263-267.
6
Brusq, J.M.; Ancellin, N.; Grondin, P.; Guillard, R.; Martin, S. and Saintillan, Y., 2006. Inhibition of lipid synthesis through activation of AMP kinase: an additional mechanism for the hypolipidemic effects of berberine. J Lipid Res. Vol. 47, pp: 1281-1288.
7
Choi, J.S.; Yokozawa, T. and Oura, H., 1991. Improvement of hyperglycemia and hyperlipemia in streptozotoc in diabetic rats by a methanolic extract of Prunus daidiana stems and its main component, prunin. PlantaMedicine. Vol. 57, pp: 208-211.
8
Cho, M.J.; Howard, L.R.; Prior, R.L. and Clark, JR., 2004. Flavonol glycosides and antioxidat capacity of various blackberry and blueberry genotypes determined by high performance liquid chromatography/mass spectrometry. Journal of the Science of Food and Agriculture. Vol. 84,
9
pp: 1771-1782.
10
Deepa, R.; Velmurugan, K.; Sara vanan, G.; Karkuzli, K.; Dwarakanath, V. and Mohan, V., 2001. Absence of Association between serum homocysteine levels and coronary Artry Disease in south indian Males. Indian Heart Journal. Vol. 53, pp: 44-47.
11
Doggrell, S.A., 2005. Berberine-a novel approach to cholesterol lowering. Expert Opinion Investing Drugs. Vol. 145, pp:683-685.
12
Fabiane, K.; Ricardo, S.; Oliveira, T.T.; Nagem, T.J.; Pinto, A.D. and Oliveira, M.G., 2001. Effect of flavonoids morin; quercetin and nicotinic acid on lipid metabolism of rats experimentally fed with triton. Braz Arch Biol Techn. Vol. 44, pp: 263-267.
13
Franks, P.W.; Rolandsson, O.; Debenham, S. L.; Fawcett, K.A.; Payne, F. and Dina, C., 2008. Replication of the association between variants in WFS1 and risk of type 2 diabetes in European populations. Diabetologia. Vol. 51, pp: 458-463.
14
Garjani, A.; Fathiazad, F.; Zakheri, A.; Akbari, N.A.; Azarmie, Y. and Fakhrjoo, A., 2009. The effect of total extract of Securigera securidaca L. seeds on serum lipid profiles, antioxidant status, and vascular function in hypercholesterolemic rats. J Ethnopharmacol. Vol. 126, No. 3, pp: 525-532.
15
Ghalayini, I.F.; Al-Ghazo, M.A. and Harfeil, M.N.A., 2011. Prophylaxis and therapeutic effects of raspberry (Rubus idaeus) on renal stone formation in balb/c mice. International Braz J Urol. Vol. 37, pp: 259-267.
16
Jakus, V., 2000. The Role of Free Radicals, Oxidative Stress and Antioxidant System in Diabetic Vascular Disease. Bratisl Lek Listy. Vol. 101, No. 10, pp: 541-551.
17
Jean-Gilles, D.; Li, L.; Ma, H.; Yuan, T.; Chichester, C.O. and Seeram, N.P., 2011. Inflammatory effects of polyphenolic-enriched red raspberry extract in an antigen induced arthritis rat model. J Agric Food Chem. Vol. 60, No. 23, pp: 5755-5762.
18
Kaliora, A.C. and Dedoussis, G.V., 2007. Natural antioxidant compounds in risk factors for CVD. Pharmacol Res. Vol. 562, pp: 99-109.
19
Keshavarz, M.; Hasanain, P.; Parviz, M.; Mansoori, M.; Soltani, N. and Mirazi, N., 2006. Oral magnesium sulfate in prevention of diabetic neuropathy in mice. Tehran Univ Med J. Vol. 64, No. 6, pp: 37-45.
20
Koca, I. and Karadeniz, B., 2009. Antioxidant properties of backberry and blueberry fruits grown in the Black Sea region of Turkey. Journal of Scientia Horticulturae. Vol. 121, No. 4, pp: 447-450.
21
Lee, K.G., 2002. Determination of antioxidant potential of volatile extract isolated from herbs. J Agric, Food Chemistry. Viol. 50, No. 17, pp: 4947-4952.
22
Livingstone, C.; Lyall, H.; Gould, GW., 1995. Hypothalamic GLUT 4 expression: a glucose-and insulin-sensing mechanism? Mol Cell Endocrinol. Vol. 107, pp: 67-70.
23
Lynn, A.; Mathew, S. and Moore, C.T., 2014. Effect of a tart cherry juice supplement on arterial stiffness and inflammation in healthy adults: a randomised controlled trial. Plant Foods for Human Nutrition. Vol. 69, No. 2, pp: 122-127.
24
Mishra, K.P.; Ganju, L.; Sairam, M.; Banerjee, P.K. and Sairam, M., 2008. A review of high throughput technology for the screening of natural products. Biomedicine and Pharmacotherapy. Vol. 62, No. 2, pp: 94-98.
25
Parham, M.; Nourouzi, M. and Mehran, N., 2009. A case report of rare tracheal mucormycosis in a diabetic patient Qom university of medical sciences journal. Vol. 3, No. 3, pp: 57-61.
26
Paul, F.; Sandra, I.; Gayle, E. and Ernst, J., 1995. Effect of vitamin C supplementation on lipoprotein cholesterol, apolipoproein, and triglyceride concentrations. Annals of Epidemiology. Vol. 5, No. 1, pp: 52-59.
27
Rameshwar, V.; Tushar, G.; Rakesh, P. and Chetan, G., 2014. Rubus fruticosus (blackberry) use as an herbal medicine. PharmacognRev. Vol. 8, No. 16, pp: 101-104.
28
Reddy, M.K.; Ruby, L.; Alexander, L. and Muraleedharan, G.N., 2005. Relative inhibition of lipid peroxidation, cyclooxygenase enzymes, and human tumor cell prolif eration by natural food colors. J Agric Food Chem. Vol. 53, pp: 9268-9273.
29
Rehman, A.; Jenner, A. and Halliwel, B., 2000. Gas Chromatography-Mass Spectrometry Analysis of DNA: Optimization of Protocols for Isolation and Analysis of DNA from Human Blood. Methods Enzymol. Vol. 319, pp: 401-417.
30
Sabu, A.MC. and Kuttan, R., 2002. Medicinal plants and its relation Antidiabetic activity of ship with their antioxidant property. Journal of Ethnopharmacology. Vol. 812, pp: 155-160.
31
Sakai, I.; Izumi, S. I.; Murano, T.; Okuwaki, S.; Makino, T. and Suzuki, T., 2001. Presence of aldose reductase inhibitors in tea leaves. Jpn. J. Pharmacology. Vol. 85, pp: 322-326.
32
Shapiro, K. and Gong, W.C., 2002. Natural products used for diabetes. J Am Pharm Assoc. Vol. 42, No. 2, pp: 217-226.
33
Singh, A.B.; Chaturvedi, J.; Narender, T. and Srivastava, A.K., 2008. Preliminary studies on the hypoglycemic effect of Peganum harmala L. Seeds ethanol extract on normal and streptozotocin induced diabetic rats. Indian J Clin Biochem. Vol. 23, pp: 391-393.
34
Suji, G. and Sivakami, S., 2003. Approaches to the treatment of diabetes mellitus: an overview. Cellular Molecular Biology. Vol. 49, pp: 635-639.
35
Tripathi, B.K. and Srivastava, A.K., 2006. Diabetes mellitus: complications and therapeutics. Medicine Science monit. Vol. 12, pp: 130-147.
36
Victor, V.M.; Rocha, M.; De, I. and Fuente, M., 2004. Immune Cell: Free Radicals and Antioxidants in Sepsis. Int Immunopharmacol. Vol. 4, No. 3, pp: 327-347.
37
Wada, L. and Ou, B., 2002. Antioxidant activity and phenolic content of Oregon caneberries. J Agric Food Chem. Vol. 50, pp: 3495-3500.
38
Wang, L.; Hecht, S.S.; Carmella, S.G.; Yu, M.; Larue, B. and Henry, C., 2009. Anthocyanins in black raspberries prevent esophageal tumors in rats. Cancer Prev Res. Vol. 2, pp: 84-93.
39
Wild, S.; Roglic, G.; Green, A.; Sicree, R. and King, H., 2004. Global preva-lence of diabetes: estimates for the year 2000 and projections for 2030. Diabetes Care. Vol. 27, pp: 1047-1055.
40
Zafra-Stone, S.; Yasmin, T.; Bagchi, M.; Chatterjee, A.; Vinson, J.A. and Bagchi, D., 2007. Berry anthocyanins as novel antioxidants in human health and disease prevention. Mol Nutr Food Res. Vol. 51, pp: 675-683.
41
Zia-Ul-Haq, M.; Riaz, M.; De Feo, V.; Jaafar, H.Z. and Moga, M., 2014. Rubus fruticosus L, constituents, biological activities and health related uses. Molecules. Vol. 19, No. 8, pp: 10998-11029.
42
Zikri, N.N.; Riedl, K.M.; Wang, L.; Lechner, J.F. and Schwartz, S.J., 2009. Black raspberry components inhibit proliferation, induce apoptosis and modulate gene expression in rat esophageal epithelial cells. Nutr Cancer. Vol. 61, No. 6, pp: 816-826.
43
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی زیستگاه لانه گزینی کبوتر جنگلی (Columba palumbus) در منطقه شراء خنداب، استان مرکزی
دره شراء زیستگاه مناسبی برای پرندگان شاخه نشین به ویژه کبوتر جنگلی می باشد. این مطالعه از ماه فروردین تا شهریور ماه سال 1397 در دره شراء حدفاصل بین پل دوآب تا پل جوشیروان در حریم 2/5 کیلومتری رودخانه شراء با استفاده از مدل سازی زیستگاه تنوع زیستی (HBM) با 4 مدل Typicalities ،Xaxent ،Logistic Regression و Multi-layer Perceptron (MLP) Neural Network در نرم افزار Terrset و Arc Gis با 6 متغیر شیب، ارتفاع، نزدیکی به رودخانه، فاصله از جاده، کاربری اراضی، فاصله از روستا انجام شد. نتایج نشان می دهد 26 لانه کبوترجنگلی در منطقه مشاهده گردید که 77 درصد لانه ها دو بار در سال برای جوجه آوری استفاده می شوند. دره شراء منتهی الیه جنوب شرقی زیستگاه لانه گذاری کبوترجنگلی در ایران می باشد. با مقایسه عملکرد 4 مدل مشخص گردید همبستگی معنی داری (0/87) بین مطلوبیت زیستگاه با مدل مگسنت و کاربری باغی و جنگلی است. اعتبار مدل مطلوبیت زیستگاه مگسنت معادل (0/974) است که نشانگر عملکرد بسیار عالی روش Maxent می باشد. بنابراین با تطبیق شرایط منطقه،مدل مگسنت معتبرتر و به واقعیت نزدیک تر است. متغییرهای نزدیکی به رودخانه و کاربری اراضی باغی و جنگلی در لانه گزینی کبوتر جنگلی از اهمیت زیادی برخوردار است.
http://www.aejournal.ir/article_105998_ef4710a533483b09b232bf7529a69095.pdf
2020-06-21
67
74
10.22034/aej.2020.105998
دره شراء
کبوتر جنگلی
زیستگاه لانه گزینی
مدل سازی زیستگاه تنوع زیستی (HBM)
امیر
انصاری
a_ansari645@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه اراک، اراک، ایران
LEAD_AUTHOR
Aghakuchakafshari, S.; Shokohi, T.; Aghili, R. and Badali, H., 2012. Epidemiology and molecular characterization of Cryotococcus neoformans isolated from pigeon excreta in Mazandaran province, Northern Iran. Journal of Medical Mycology. Vol. 22, pp: 160-166.
1
Aghanajafi, S. and Bakhshipour, R., 2018 . Modeling of Wood Pigeon (Columba palumbus) Nesting Selection in Yazd Baghshadi Protected Area with the Use of Binomial Logistic Regression. Journal of Animal Environment. Vol. 10, pp: 67-72.
2
Aghanajafizadeh, S.; Eslami, K.; Abbasian, H. and Heydari, F., 2014. Nest-site selection by the Woodchat Shrike (Lanius senator) in Boroyeh Wildlife Sanctuary, Inner Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 60, pp: 20-23.
3
Aghanajafizadeh, S.; Heydari, F.; Naderi, G. and Hemami, M.R., 2010. Nest-hole site selection by Syrian woodpecker (Dendropus syriacus) in Baghshadi protected area, Yazd, Iran. Zoology in the Middle east. Vol. 53, pp: 1-6.
4
Anderson, M.C.; Watts, J.M.; Freilich, J.E.; Yool, S.R.; Wakefield, G.I.; Mccaulery, J.F. and Fahnestock, A., 2000. Regression-tree modeling of Iran. Journal of Animal Environment. Vol. 8, pp: 9-16
5
Ansari, A.,2009. Monitoring Ecosystems and Natural Habitats of Markazi Province Identification of Degraded and Vulnerable Habitats. Journal of Iran DOE. Vol. 47, pp: 22-32.
6
Ansari, A., 2017. Comparison of Habitat Suitability Model for the Wild sheep (Ovis orientalis) using ENFA and MAXENT methods in Markazi province.
7
Arekhi, S. 2015. Prediction of spatial land use changes based on LCM in a GIS environment (A case study of Sarabeleh (Ilam), Iran, Iranian Journal of Forest and Range Protection Research. Vol. 12, No. 1, , pp: 1-19.
8
Baptista, L.F.; Trail, P.W. and Horblit, H.M., 1997. Common Woodpigeon (Columba palumbus). In: del Hoyo, J., Elliott, A., Sargatal, J., Christie, D.A. and de Juana, E. (eds), Handbook of the Birds of the World Alive, Lynx Edicions, Barcelona.
9
Bird Life International. 2015. European Red List of Birds. Office for Official Publications of the European Communities, Luxembourg.
10
Bird Life International. 2016. Columba palumbus. The IUCN Red List of Threatened Species 2016: e. T22690103A86077750.http://dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2016- .RLTS.T22690103A86077750.en
11
del Hoyo, J.; Elliott, A. and Sargatal, J., 1997. Handbook of the Birds of the World, vol. 4: Sandgrouse to Cuckoos. Lynx Edicions, Barcelona, Spain.
12
Elias, G.L.; Reino, L.M.; Silva, T.; Tomé R. and Geraldes, P., 1999. Atlas das Aves Invernantes do Baixo Alentejo. Sociedade Portuguesa para o Estudo das Aves. Lisbon, Portugal. pp:234-235
13
Fey, K.; Vuorisalo, T.; Lehikoinen, A. and Vesa, S., 2015. Urbanisation of the wood pigeon (Columba palumbus) in Finland. Landscape and Urban Planning. Vol. 134, pp: 188-194.
14
Gutierrez-Galan, A.; Alonso Gonzalez, C. and Maroto De Mercado, J., 2017. Composicion de la dieta de la paloma torcaz Columba palumbus en el sur mediterraneo de ESPANA. Ardeola. Vol. 64, No. 1, pp: 17-30.
15
IUCN. 2016. The IUCN Red List of Threatened Species. Version 2016-3. Available at: www.iucnredlist.org.
16
Kirak, D.A. and Hobson, K.A., 2001. Bird habitat relationships in jack pine boreal forests. Forest Ecology and Management. Vol. 147, pp: 217-243.
17
Levins, R., 1966. The strategy of model building in population ecology. American Scientist. Vol. 54, No. 4, pp: 421-431.
18
Mack, E.L.; Firbank, L.G.; Bellary, P.E.; Hinsley, S.A. and Veitch, N., 1997. The comparison of remotely sensed and ground–based habitat area data using species–area.
19
Mansouri, J., 2008. Field guide of Birds of Iran, Tehran First Edition. Publications book of Farzaneh. Tehran. 513 p.
20
Mondloch, C.J., 1995. Chick hunger and begging affect parental allocation of feedings in pigeon, Animal Behaviour. Vol. 49, pp: 601-613.
21
Moon, R.D. and Ziegler, H.P., 1979. Food preferences in the pigeon (Columba livia). Physiology and Behavior. Vol. 22, pp: 1171-1182.
22
Morrison, M.L., 2002. A proposed research emphasis to overcome the limits of wildlife habitat relationship studies. Journal of Wildlife Management. Vol.65, pp: 613-623. in the centeral Mojave Desert. Ecological application. Vol. 10,
23
pp: 890-897. Models, Applid ecology. Vol. 34, pp: 1222-1228. Scientist. Vol. 421, pp: 421-431.
24
Oliveira, P.; Menezes, D.; Jones, M. and Nogales, M., 2006. The influence of fruit abundance on the use of forest and cultivated field habitats by the endemic Madeira laurel pigeon Columba trocaz: Implications for conservation. Biological Conservation. Vol. 130, pp: 538-548.
25
Pearson, R.G., 2007. Species’ distribution modeling for conservation educators and practitioners. American Museum of Natural History. pp: 1-50.
26
Perea, R. and Gutiérre, G., 2016. Introducing cultivated trees into the wild: Wood pigeons as dispersers of domestic olive seeds. Acta ecologica. Vol. 71, pp: 73-79.
27
Ronald Eastman, J., 2015. TerrSet Tutorial, Production of Clark University, www.clarklabs.org
28
Tucker, G.M. and Heath, M.F., 1994. Birds in Europe: their conservation status. BirdLife International, Cambridge, U.K.
29
Verry, E.S.; Hornbeck, J.W. and Dolloff, C.A., 2000. Riparian Management in Forests of the Continental Eastern United States, Lewis Publisher.
30
Yang, Y.; Qiao, J; Combreau, O.; Gao, X. and Zhong, W., 2003. Breeding Habitat Selection by the Houbara Bustard Chlamydotis [undulata] macqueenii in Mori, Xinjiang, China. Zoological studies. Vol. 43, pp: 470-475.
31
ORIGINAL_ARTICLE
تجمع زیستی فلز جیوه بافت های کلیه، کبد، عضله و پر پرندگان در خور موسی (مطالعه موردی: اگرت کوچک (Egretta garzetta) و پرستوی دریایی معمولی (Sterna hirundo))
در این مطالعه مقادیر جیوه در بافت های (پر، کلیه، کبد و عضله) دو گونه از پرندگان خورموسی به نام های اگرت کوچک ( Egretta garzetta) و پرستوی دریایی معمولی (Egretta garzetta) بررسی شد. در تیرماه سال 1390، 40 پرنده متعلق به دو گونه اگرت کوچک و پرستوی دریایی معمولی (از هرگونه 20 عدد 10 تا نر 10 تا ماده)، به صورت تصادفی در کل منطقه خورموسی واقع در استان خوزستان جمع آوری گردید. ابتدا پرنده ها به وسیله ترازوی دیجیتالی وزن شدند و سپس نمونه ها به آزمایشگاه منتقل شدند. اندازه گیری جیوه به وسیله دستگاه LECO254AMA استاندارد شماره 5722D-ASTM انجام شد. نتایج به دست آمده از این تحقیق نشان داد غلظت های جیوه در بافت های مورد مطالعه بیش تر تحت تاثیر محل تغذیه و جنسیت پرندگان بود. هم چنین تفاوت معنی داری در مقادیر جیوه بین جنس نر و ماده اگرت کوچک و پرستوی دریایی معمولی وجود داشت (0/05>P). میزان تجمع غلظت جیوه در بافت های پر، کبد، کلیه و عضله سینه پرستوی دریایی نر به ترتیب 13/5، 5/37، 4/67 و 2/36 میکروگرم برگرم و در پرستوی دریایی معمولی ماده به ترتیب 12/45، 3/26، 38/06، 1/2 میکروگرم بر گرم بود. در اگرت کوچک نر نیز تجمع غلظت جیوه در بافت های پر، کبد، کلیه و عضله سینه به ترتیب برابر با 7/16، 4/56، 3/82 و 1/53 میکروگرم بر گرم و در اگرت کوچک ماده به ترتیب 6/36، 2/68، 2/16 و 1/33 میکروگرم بر گرم به دست آمد .
http://www.aejournal.ir/article_106062_f90268ab24c197464eaa35c467e2d340.pdf
2020-06-21
75
82
10.22034/aej.2020.106062
جیوه
تجمع زیستی
خور موسی
اگرت کوچک
پرستوی دریایی
مهدی
طیبی
mehdi.tayebi1985@gmail.com
1
گروه محیط زیست، شرکت بهره برداری نفت و گاز آغاجاری، آغاجاری، ایران
LEAD_AUTHOR
صدیقه
جهانگیری
sadigheh.jahangiri@gmail.com
2
باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
AUTHOR
پورخباز، ع. و نوروزی، م.، 1391. تعیین فلزات سنگین و منابع انتشار آن ها در ذخیره گاه زیست کره حرا. طرح پژوهشی سازمان حفاظت محیط زیست استان هرمزگان.
1
خادمی، ن.؛ ریاحی بختیاری، ع. و سبحان اردکانی، س.، 1396. ارزیابی و مقایسه تجمع عناصر نیکل، سرب و وانادیوم در پوسته و محتویات تخم گونه های پرستوی دریایی کاکلی کوچک (Sterna bengalensis) و سلیم خرچنگ خوار (Dromas ardeola) در جزایر خور موسی خلیج فارس. فصلنامه علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 4، شماره 19، صفحات 593 تا 606.
2
شفاهی پور، آ.، 1379. بررسی پرندگان آبزی آبزیان در خوریات ماهشهر. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه شهید چمران اهواز.
3
ذوالفقاری، ق.؛ اسماعیلی ساری، ع.؛ قاسمپوری، س.م. و حسن زاده کیابی، ب.، 1384. بررسی غلظت جیوه در پر 37 گونه از پرندگان ایران: تاثیر سطح تغذیه، استراتژی تغذیه و جایگاه رده بندی، مجله علوم دریایی ایران. دوره 4، شماره های 4و 3، صفحات 1 تا 11.
4
علی آبادیان، م.؛ باقریان، ع.ا. و برزگری، ا.ع.، 1384. پرندگان. انتشارات سخن گستر، جلد اول: چاپ اول، مشهد. 278 صفحه.
5
منصوری، ج.، 1379. پرنده شناسی. انتشارات دفتر نشر فرهنگ اسلامی، چاپ اول، تهران. 272 صفحه.
6
هاشمی، ا.؛ صفاهیه، ع. و نصوری، ع.، 1395. ارزیابی فلزات سنگین در پر و تخم پرنده ماده کاکایی صورتی (Larus genei) در خور موسی. نشریه اقیانوس شناسی. جلد ۷، شماره ۲۸، صفحات ۹۱ تا ۹۸.
7
Abdennadher, A.; Ramírez, F.; Romdhane, M.S.; Ruiz, X.; Jover, L. and Sanpera, C., 2011. Little Egret (Egretta garzetta) as a bioindicator of trace element pollution in Tunisian aquatic ecosystems. Environmental monitoring and assessment. Vol. 175, pp: 677-684.
8
Arctic Monitoring and Assessment Programme (AMAP). 1998. Impact of mercury on the environment. Global Mercury Assessment, Available: http://www.amap.no.
9
Barbieri, E.; Passos, E.A.; Filippini, A.; dos Santos, I.S. and Garcia, C.A.B., 2010. Assessment of trace metal concentration in feathers of seabird (Larus dominicanus) sampled in the Florianópolis. Brazilian coast. Environmental monitoring and assessment. Vol. 169, pp: 631-638.
10
Bearchop, S.; Waldron, S.; Thompson, D. and Furness, R., 2000. Bioamplification of Mercury in Great Skua Catharacta skua Chicks: The Influence of Trophic Status as Determined by Stable Isotope Signatures of Blood and Featheres. Marine Pollution Bulletin. Vol. 40, pp: 181-185.
11
Burger, J., 2002. Food Chain Differences Affect Heavy Metals in Bird Eggs in Barnegat Bay. Environmental Research Section. Vol. 90, pp: 33-39.
12
Burger, J. and Gochfeld, M., 1993. Heavy Metal and Selenium Levels in Feathers of Young Contamination and Toxicology. Vol. 25, pp: 322-327.
13
Burger, J. and Gochfeld, M., 2000. Metal Level in Feather of 12 Species of Seabird from Midway Atoll in the Northern Pacific Ocean. The Science of Total Environment. Vol. 257, pp: 37-52.
14
Dauwe, T.; Bervowts, L.; Pinxten, R.; Blust, R. and Eens, A., 2003. Variation of heavy metals within & among feathers of birds of prey: effects of molt and external contamination. Environmental Pollution. Vol. 124, pp: 429-436.
15
Ek, K.H.; Morrison, M.; Lindberg, P. and Rauch, S., 2004. Comparative Tissue Distribution of Metals in Birds in Sweden Using ICP-MS and Laser Ablation ICP-MS. Archives of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 47, pp: 259-269.
16
Fowler, S.W., 1990. Critical review of selected heavy metal and chlorinated hydrocarbon concentrations in the marine environment. Marine Environmental Research. Vol. 29, pp: 1-64.
17
Furness, R.W. and Greenwood, J.J.D., 1993. Birds as monitors of environmental change. Chapman and Hall, London. 356 p.
18
Gochfeld, M.; Gochfeld, D.G.; Minton, D.; Murray, J.R.B.G.; Pyle, P.; Seto, N.; Smith, D. and Burger, J., 1999. Metal in Feathers of Bonin Perel, Christmas Shearwater, Wedge-Tailed Shearwater and Red- Tailed Tropicbird in the Hawalan Islands., Northern Pacific. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 59, pp: 343-358.
19
Harikumar‚ P.S.; Nasir, V.P. and Mujeebu rahman, M.P., 2009. Distribution of heavy metal in the core sediments of a tropical wetland system. Environmental Science technology. Vol. 6, No. 2, pp: 225-232.
20
Holdgate M.W., 1979. A perspective of Environmental Pollution. Cambridge University Press, Cambridge.
21
Houserova, P.; Kuban, V.; Kracmar, S. and Sitko, J., 2007. Total Mercury and Mercury Species in Birds and Fish in an Aquatic Ecosystem in the Czech Republic. Environmental Pollution. Vol. 145, pp: 185-194.
22
Howarth, D.M.; Grant, T.R. and Hulbert, A.J., 1982. A comparative study of heavy metal accumulation in tissues of the crested tern, sterna bergii, breeding near an industrial port before and after harbour dredging and ocean dumping. Australia Wildlife Reserch. Vol. 9, pp: 571-577.
23
Kaur, N. and Dhanju, C.K., 2013. Heavy metals concentration in excreta of free living wild birds as indicator of environmental contamination. The Bioscan. Vol. 8, No. 3, pp: 1089-1093.
24
Kim, E.Y.; Murakami, T.; Saeki, K. and Tatsukawa, R., 1996. Mercury Level and its Chemical Form in Tissues and Organs of Seabirds. Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 30, pp: 259-266.
25
Kim, J.; Park, S.K. and Koo, T.H., 2007. Trace elements and pollutants concentrations in shorebirds from Yeongjong Island, Korea in the East Asian-Australian migration flyways. Ecotoxicology. Vol. 16, pp: 403-410.
26
Lewis, S.A. and Furness, R.W., 1991. Mercury Accumulation and Excretion in Laboratory Reared Black Headed Gull Larus ridibundus Chicks. Archives of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 21, pp: 316-320.
27
Monteiro, L.R.; Granadeiro, J.P.; Furness, R.W. and Oliveira, P., 1999. Contemporary Patterns of Mercury Contamination in the Portuguese Atlantic Inferred from Mercury Concentration in Seabird Tissues. Marine Environmental Research. Vol. 47, pp: 137-156.
28
Ochoa-acuna, H.; Sepulvede M.S. and Gross, T.S., 2002. Mercury in Feathers from Chilean birds: Influence of Location, Feeding Strategy, and Taxonomic Affiliation. Marine Pollution Bulletin. Vol. 44, pp: 340-349.
29
Rothschild, R.F.N. and Duffy, I.K., 2005. Mercury Concentrations in Muscle, Brain and Bone of weatern Alaskan Waterfowl. Science of the Total Environment. Vol. 349, pp: 277-283.
30
Saeki, K.; okabe, Y.; Kim, E.Y.; Tanabe, S.; Fukuda, M. and Tatsukawa, R., 2000. Mercury and cadminum in common cormorants (Phalacrorax carbo). Environmental Pollution. Vol. 108, pp: 249-255.
31
Scharenberg, W., 1989. Heavy metal in tissue and feathers of grey horns, Ardea cinerea and cormorants Phalacrocorax carbo sinensis. Journal of Ornitthology. Vol. 130, pp: 25-33.
32
Spalding, M.G.; Fredrick, P.C.; McGill, H.C.; Bouton, S.N. and McDowell, L.R., 2000. Methylmercury Accumulation in Tissues and Its Effects on Growth and Appetite in Captive Great Egrets. Journal of Wildlife Diseases. Vol. 36, No. 3, pp: 411-422.
33
Tsipoura, N.; Burgerv J.; Feltes, R.; Yacabucci, J.; Mizrahi, D.; Jeitner, C. and Gochfeld, M., 2008. Metal concentrations in three species of passerine birds breeding in the Hacensack Meadowlands of New Jersey. Environmental Research (in press).
34
Veerle, J.; Dauwe, T.; Rianne, P.; Lieven, B.; Ronny, B. and Marcel, E., 2004. The Importance of Exogenous Contamination on Heavy Metal Levels in Bird Feathers. A Field Experiment with Free-living great tits, Parus majer. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 6, pp: 356-360.
35
Xu, X. and Wang, W.X., 2017. Mercury exposure and source tracking in distinct marine-caged fish farm in southern China. Environmental Pollution. Vol. 220, pp: 1138-1146.
36
Zhang, Y.; Ruan, L.; Fasola, M.; Boncompagin, E.; Dong, Y.; Dai, N.; Gandini, C.; Orvini, E. and Ruiz, X., 2006. Little Egrets (Egretta garzeeta) and Trace Metal Contamination in Wetlands of China. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 118, pp: 355-536.
37
Zilloux, E.J.; Procella, D.B. and Benoit, J.M., 1983. Mercury cycling and effects in freshwater wetland ecosystems. Environmental Toxicology and Chemistry. Vol. 12, pp: 245-264.
38
Zhou, Q.; Zhang, J.; Shi, J.; Fu, J. and Jiang, G., 2008. Biomonitoring: An appealing tool for assessment of metal pollution in the aquatic ecosystem. Analytica chimica acta. Vol. 606, pp: 135-150.
39
ORIGINAL_ARTICLE
مدل سازی مطلوبیت زیستگاه پلیکان پاخاکستری (Pelecanus crispus) با استفاده از روش حداکثر آنتروپی (MAXENT) در ایران
این پژوهش به صورت کمی به مدل سازی مطلوبیت زیستگاه پلیکان پاخاکستری با استفاده از مدل MAXENT در کشور پرداخته است. این تحقیق با استفاده از نقاط حضور این پرنده در ایران و داده های محیطی از پایگاه داده اقلیمی (world climate) به دست آمد. نتایج آزمون VIF جهت بررسی هم خطی بین متغیرها به کار گرفته شد که 7 متغیر میانگین درجه حرارت سالیانه (1 Bio)، میانگین مقادیر روزانه (2 Bio)، هم دمایی (3 Bio)، تغییرات فصلی درجه حرارت (4 Bio)، بارش سالیانه (12 Bio)، تغییرات فصلی بارش (15 Bio)، میانگین بارش در خشک ترین فصل سال (17 Bio) دارای کم ترین میزان هم خطی بوده که به عنوان متغیرهای اقلیمی انتخاب و مورد استفاده قرار گرفتند. شاخص AUC مدل به میزان 0/953 به دست آمد. براساس نمودار جک نایف متغیرهای میانگین مقادیر روزانه حرارت (2 Bio) و تغییرات فصلی درجه حرارت (4 Bio) به ترتیب بیش ترین درصد مشارکت و اهمیت و متغیرهای میانگین بارش در خشک ترین فصل سال (14 Bio) و هم دمایی (3 Bio) کم ترین درصد مشارکت و اهمیت را در تهیه نقشه مطلوبیت زیستگاه گونه پلیکان پاخاکستری در مدل مکسنت را داشتند. در این مطالعه، نتایج مدل سازی MAXENT نشان می دهد تنها 77838 کیلومتر مربع (5 درصد از مساحت کل کشور) برای حضور پلیکان پاخاکستری مطلوب می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_106102_4f58ad7289bf51a0fa921e53d61c3869.pdf
2020-06-21
83
90
10.22034/aej.2020.106102
پلیکان پاخاکستری
مطلوبیت زیستگاه
داده های اقلیمی
MAXENT
محمدعلی
پویانی
elham.haghshenas1368@gmail.com
1
گروه محیط زیست، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
AUTHOR
بهمن
شمس اسفندآباد
b-shams@iau-arak.ac.ir
2
گروه محیط زیست، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
LEAD_AUTHOR
عباس
احمدی
a-ahmadi@iau-arak.ac.ir
3
گروه محیط زیست، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
AUTHOR
حمید
ترنج زر
h-toranjzar@iau-arak.ac.ir
4
گروه محیط زیست، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
AUTHOR
انصاری، م.، 1393. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه درنای معمولی (Grus grus) در تالاب میقان اراک. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. سال 7، شماره 42، صفحات 50 تا 57.
1
سرباز، م.؛خانی، ع. و فراشی،آ.، 1397. پیشبینی احتمال حضور گونه زرده بر (Vormela peregusna) در استان خراسان رضوی با استفاده از روش MaxEnt.. مجله زیست شناسی جانوری تجربی. دوره 7، شماره 1، صفحات 35 تا 44.
2
شریبی، ز.؛ خلیلی پور، ا. و عسگری، م.، 1397. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه اردک مرمری (Marmaronetta angustirostris) با استفاده از روش حداکثر آنتروپی. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 10، شماره 2، صفحات 75 تا 82.
3
کرمی، م.؛ ریاضی، ب. و کلانی، ن.، 1385. ارزیابی زیستگاه کفتار ایرانی در پارک ملی خجیر و ارائه مدل مطلوبیت به روشHEP. مجله علوم محیطی. دوره 11، صفحات 77 تا 86.
4
مشتاقی، م.؛ کابلی، م. و شمسایی، م.، 1392. تعیین شاخص مطلوبیت زیستگاه رودخانه ای اردک سرسبز (Anas platyrhynchos) در رودخانه زاینده رود. نشریه اکوبیولوژی تالاب. دوره 5، شماره 18، صفحات 13 تا 21.
5
منوچهری، و.،1390. مکان یابی و تعیین مطلوبیت زیستگاه گوزن زرد ایرانی با استفاده از روش HEP در منطقه حفاظت شده قلاجه استان کرمانشاه به منظور رهاسازی آن. پایان نامه کارشناسی ارشد، واحد علوم وتحقیقات اهواز.
6
Ashrafzadeh, M.R.; Naghipour, A.A.; Haidarian, M. and Khorozyan, I., 2019. Modeling the response of an endangered flagship predator to climate change in Iran. Mammal Research. Vol. 64, No. 1, pp: 39-51.
7
Bombi, P.; Salvi, D.; Vignoli, L. and Bologna, M.A., 2009. Modelling Bedriaga's rock lizard distribution in Sardinia: an ensemble approach. Amphibia,Reptilia. Vol. 30, No. 3, 413 p.
8
Dong, Z.; Wang, Z.; Liu, D.; Li, L.; Ren, C.; Tang, X.; Jia, M. and Liu, C., 2013. Assessment of habitat suitability for waterbirds in the West Songnen Plain, China, using remote sensing and GIS. Ecological engineering. Vol. 55, pp: 94-100.
9
Elith, J.; Phillips, S.J.; Hastie, T.; Dudík, M.; Chee, Y.E. and Yates, C.J., 2011. A statistical explanation of MaxEnt for ecologists. Diversity and distributions. Vol. 17, pp: 43-57.
10
Fielding, A.H. and Haworth, P.F., 1995. Testing the generality of bird‐habitat models. Conservation biology. Vol. 9, No. 6, pp: 1466-1481.
11
Franklin, J., 2010. Mapping species distributions: spatial inference and prediction. Cambridge University Press.
12
Guisan, A.; Thuiller, W. and Zimmermann, N.E., 2017. Habitat Suitability and Distribution Models: With Applications in R. Cambridge University Press.
13
Guisan, A.; Tingley, R.; Baumgartner, J.B.; Naujokaitis Lewis, I.; Sutcliffe, P.R.; Tulloch, A.I.; Regan, T.J.; Brotons, L.; McDonald‐Madden, E. and Mantyka Pringle, C., 2013. Predicting species distributions for conservation decisions. Ecology Letters. Vol. 16, pp: 1424-1435.
14
Hirzel, A.H.; Helfer, V. and Metral, F., 2001. Assessing habitat-suitability models with a virtual species. Ecological modelling. Vol. 145, No. 2-3, pp: 111-121.
15
Hua, Y.; Cui, B. and He, W., 2012. Changes in water birds habitat suitability following wetland restoration in the Yellow River Delta, China. Clean Soil, Air, Water. Vol. 40, No. 10, pp: 1076-1084.
16
Mack, E.L.; Firbank, L.G.; Bellamy, P.E.; Hinsley, S.A. and Veitch, N., 1997. The comparison of remotely sensed and ground-based habitat area data using species-area models. J of Applied Ecology. Vol. 34, No. 5, pp: 1222-1228.
17
Pearson, R.G.; Raxworthy, C.J.; Nakamura, M. and Townsend,P.A., 2007. Predicting species distributions from small numbers of occurrence records: a test case using cryptic geckos in Madagascar. J of biogeography. Vol. 34, pp: 102-117.
18
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological modelling. Vol. 190, pp: 231-259.
19
Qin, A.; Liu, B.; Guo, Q.; Bussmann, R.W.; Ma, F.; Jian, Z. and Pei, S., 2017. Maxent modeling for predicting impacts of climate change on the potential distribution of Thuja sutchuenensis Franch., an extremely endangered conifer from southwestern China. Global Ecology & Conservation. Vol. 10, pp: 139-146.
20
Remya, K.; Ramachandran, A. and Jayakumar, S., 2015. Predicting the current and future suitable habitat distribution of Myristica dactyloides Gaertn. Using MaxEnt model in the Eastern Ghats, India. Ecologi engineer. Vol. 82, pp: 184-188.
21
Sebastián‐González, E. and Green, A.J., 2014. Habitat use by waterbirds in relation to pond size, water depth, and isolation: lessons from a restoration in southern Spain. Restoration Ecology. Vol. 22, No. 3, pp: 311-318.
22
Tian, B.; Zhou, Y.; Zhang, L. and Yuan, L., 2008. Analyzing the habitat suitability for migratory birds at the Chongming Dongtan Nature Reserve in Shanghai, China. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 80, pp: 296-302.
23
Wang, Z.; Song, K.; Zhang, B.; Liu, D.; Ren, C.; Luo, L.; Yang, T.; Huang, N.; Hu, L.; Yang, H. and Liu, Z., 2009. Shrinkage and fragmentation of grasslands in the West Songnen Plain, China. Agriculture, ecosystems and environment. Vol. 129, No. 1-3, pp: 315-324.
24
Waltert, M.; Chuwa, M. and Kiffner, C., 2009. An assessment of the puku (Kobus vardonii Livingstone 1857) population at Lake Rukwa, Tanzania. African journal of ecology. Vol. 47, No. 4, pp: 688-692.
25
Weber, T.C., 2016. Maximum entropy modeling of mature hardwood forest distribution in four US states. Forest Ecology and Management. Vol. 261, No. 3, pp: 779-788.
26
Wilson, C.D.; Roberts, D. and Reid, N., 2011. Applying species distribution modelling to identify areas of high conservation value for endangered species: A case study using Margaritifera margaritifera (L.). Biological Conservation. Vol. 144, No. 2, pp: 821-829.
27
Yang, X.Q.; Kushwaha, S.P.S.; Saran, S.; Xu, J. and Roy, P.S., 2013. Maxent modeling for predicting the potential distribution of medicinal plant, Justicia adhatoda L. in Lesser Himalayan foothills. Ecological Engineer. Vol. 51, pp: 83-87.
28
Yi, Y.; Cheng, X.; Yang, Z. and Zhang, Sh., 2016. Maxent modeling for predicting the potential distribution of endangered medicinal plant in Yunnan, China. Echography. Vol. 92, pp: 260-269.
29
Young, N., 2011. A MaxEnt Model v3.3.3e Tutorial (ArcGIS v10).
30
Young, N.; Carter, L. and Evangelista, P., 2013. A MaxEnt Model v3.3.3e Tutorial (ArcGIS v10).
31
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر سیلی مارین، سیپروترون استات و سرماخوردگی بزرگسالان بر فراسنجه های خونی خروس های بومی
استامینوفن یک ترکیب تببری است که در دوزهای بالا منجر به آسیب شدید اکسیداتیو به بافت کبد و دیگر بافت های بدن طیور و پستانداران می شود. اثرات آسیب رسان کبدی استامینوفن، ترکیبات آنتی هیستامینی و سیپروترون استات در مطالعات قبلی نشان داده شده است. علاوه بر این، گزارش شده است که سیلی مارین از خصوصیات محافظ کبدی و کلیوی برخوردار است. هدف از مطالعه حاضر، بررسی اثرات سیلی مارین (400 پی پی ام جیره، 20 روز آزمایشی) بر روی برخی از متابولیت های سرمی خروس های بالغ بومی در پس از خوراندن ربع یک قرص سرماخوردگی (استامینوفن 42/8، فنیل افرین هیدروکلراید 0/66، کلرامفنیکل 0/26 و دکسترومتورفان هیدروبروماید 1/97 میلی گرم بر کیلوگرم وزن بدن در روز، از روز 15 تا 20 آزمایش) بود. هم چنین در آزمایش دوم اثرات متابولیکی سیپروترون استات (10 میلی گرم بر کیلوگرم وزن بدن به مدت 5 روز) مورد بررسی قرار گرفت. نتایج نشان داد که سیلی مارین در سطح 400 میلی گرم بر کیلوگرم جیره بر هیچ کدام از متابولیت های خونی تأثیر معنی داری نداشت (0/05<P). خوراندن یک چهارم یک قرص سرماخوردگی بزرگسالان به طور معنی داری کلسترول کل (0/01>P) و پروتئین کل سرمی (0/05>P) را در گروه شاهد کاهش داد. سیلی مارین کاهش پروتئین سرمی ناشی از استامینوفن را مهار نمود که می تواند بر اثر محافظت کنندگی کبدی سیلی مارین دلالت نماید. سیپروترون استات منجر به افزایش تستوسترون، تیروکسین و اسیداوریک سرمی گردید، ولی بر گلوکز، کلسترول کل و پروتئین کل سرمی تأثیر معنی داری نداشت (0/05<P). دخالت محور هیپوتالاموس-هیپوفیز-گناد ممکن است در افزایش تستوسترون سرمی نقش داشته باشد.
http://www.aejournal.ir/article_106155_97daf615d597d3bac4c780406569ef92.pdf
2020-06-21
91
100
10.22034/aej.2020.106155
سیلی مارین
قرص سرماخوردگی
سیپروترون استات
خروس بومی
متابولیت های خونی
فرهاد
صمدیان
fsamadian@yu.ac.ir
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه یاسوج، یاسوج، ایران
LEAD_AUTHOR
مسعود
متوسل المهدی
masoud.motavasel@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه یاسوج، یاسوج، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، ر.؛ محمدآبادی، ط.؛ ساری، م.؛ سالاری، س.؛ ضمیری، م.ج. و بیگی نصیری، م.ت.، 1392. اثر سیلی مارین بر تنش اکسیداتیو ایجاد شده توسط سرب در جوجه های گوشتی. نشریه پژوهش های علوم دامی ایران. دوره 5، شماره 4، صفحات 302 تا 312.
1
افشین، م.؛ افضلی، ن.؛ مجتهدی، م. و محمدی، ع.، 1396. تاثیر افزودن بذر، عصاره و گیاه خارمریم بر عملکرد، صفات لاشه و برخی از فراسنجه های خونی جوجه های گوشتی تغذیه شده با جیره آلوده به آفلاتوکسین B1. تولیدات دامی. دوره 19، شماره 2، صفحات 403 تا 414.
2
پوراحمد، ج.؛ مرتضوی س.ع.؛ تابنده ح.ع.؛ کریمی، ف.؛ قوام س.م. و مدنی، ه.، 1396. بررسی اثرات قلبی-عروقی قرص سرماخوردگی بزرگسالان و آنتی هیستامین دکونژستان در بیماران مبتلا به پرفشاری خون. نشریه پژوهنده. دوره 7، شماره 2، صفحات 9 تا 15.
3
جمشیدی،ا.؛احمدی آشتیانی،ح.؛غلامحسینی،ب. و بکایی، س.،1386. مطالعه اثرات تجویزی خوراک عصاره گیاه خار مریم (سیلی مارین) بر تغییرات بافتی و بیوشیمیایی ناشی از آفلاتوکسین در طیور گوشتی. فصلنامه گیاهان دارویی. دوره 4، شماره 24، صفحات 92 تا 100.
4
راعی، ح.؛ نجفی قراجه، ر. و کریمی ترشیزی، م. ا.، 1395. اثر پودر دانه گیاه خارمریم (Silibum marianum) و گیاه آویشن (Thymus Vulgaris) و ترکیب آن ها روی برخی خصوصیات لاشه، فراسنجه های خونی و پاسخ سیستم ایمنی جوجه های گوشتی تغذیه شده با جیره آلوده به آفلاتوکسین B1. تحقیقات تولیدات دامی. دوره 4، شماره 1، صفحات 53 تا 66.
5
رشیدی، ن.؛ بوجارپور، م.؛ چاجی، م. و آقایی، ع.، 1393. بررسی اثر مقادیر مختلف بذر خارمریم بر عملکرد، خصوصیات لاشه و فراسنجه های خونی جوجه های گوشتی. تحقیقات تولیدات دامی. دوره 3، شماره 4، صفحات 11 تا 21.
6
زرگری، ع. 1375. گیاهان دارویی. چاپ پنجم، مؤسسه انتشارات و چاپ دانشگاه تهران، جلد 3، صفحات 34 تا 38.
7
فانی مکی، ا.؛ ابراهیم زاده، ا.؛ انصاری، ن.ح. و قزاقی، م.، 1392. اثر گیاهان دارویی خار مریم (. Silybum marianum L) و آویشن
8
(. Thymus vulgaris L) بر سیستم ایمنی و برخی از فرآسنجه های خونی در جوجه های گوشتی. آسیب شناسی درمانگاهی دامپزشکی. دوره 7، شماره 2، صفحات 1836 تا 1843.
9
قره ویسی، ش. 1397. تاثیر سطوح مختلف گیاه دارویی خار مریم (Silybum Marianum) و آنتی بیوتیک کوتریموکسازول بر متابولیت های خونی مرغان گوشتی سویه راس. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 10، شماره 1، صفحات 73 تا 78.
10
مظفرپورتوبکانلو، م.؛ شکوری، م.د. و جانمحمدی، ح.، 1396. اثر بذر خار مریم خام و حرارتدیده بر عملکرد رشد و برخی از فراسنجه های خونی و ایمنی هومورال جوجه های گوشتی. نشریه پژوهشهای علوم دامی. دوره 27، شماره 4، صفحات 77 تا 90.
11
Ali, E.H.A., 2008. Protective effect of Echinacea on cyproterone induced liver damage in rat. Pakistan Journal of Biological Sciences. Vol. 11, No. 21, pp: 2464-2471.
12
Aghazadeh, S.; Amini, R.; Yazdanparast, R. and Ghaffari, S.H., 2011. Anti-apoptotic and anti-inflammatory effects of Silybum marianum in treatment of experimental steatohepatitis. Experimental and Toxicologic Pathology. Vol. 63, pp: 569-574.
13
Ali, B.H. and Blunden, G., 2003. Pharmacological and toxicological properties of Nigella sativa. Phytotherapy Research. Vol. 17, pp: 299-305.
14
Amiri dumari, H.; Sarir, H.; Fani makki, O. and Afzali, N., 2013. Effects of milk thistle seed against aflatoxin B. Journal of Research in Medical Sciencs. Vol. 18, No. 9, pp: 786-790.
15
Balthazart, J., 1978. Behavioural and physiological effects of testosterone propionate and cyproterone acetate in immature male domestic ducks, Anas platyrhynchos.Zeitschrift für Tierpsychologie. Vol. 47, No. 4, pp: 410-421.
16
Bell, D.J.; Mclndoe, W.M. and Gross, D., 1959. Tissue components of the domestic fowl 3. The non-protein nitrogen of plasma and erythrocytes. Biochemical Journal. Vol. 71, No. 2, pp: 355-364.
17
Crowell, P.L., 1999. Prevention and therapy of cancer by dietary monoterpenes. Journal of Nutrition. Vol. 129, pp: 775-778.
18
Davison, T.F.; Ezzat, A.R. and Rea, J., 1989. Use of Cyproterone acetate to lower circulating corticosterone and its effects on lymphocytes in domestic fowl. Research in Veterinary Science. Vol. 46, pp: 105-109.
19
Doneley, B. and Doneley, R., 2010. Avian Medicine and Surgery in Practice: Companian and Aviary Birds. Manson Publishing, London.
20
Edrington, T.S.; Kubena, L.F.; Harvey, R.B. and Rottinghaus, G.E., 1997. Influence of a superactivated charcoal on the toxic effects of aflatoxin or T-2 toxin in growing broilers. Poultry Science. Vol. 76, No. 9, pp: 1205-1211.
21
Federman, D.D., Robbins, J. and Rall, J.E., 1958. Effects of methyl testosterone on thyroid function, thyroxine metabolism, and thyroxine-binding protein. J Clinical Investigation. Vol. 37, pp: 1024.
22
Granberg, R.A. and Rasmuson, A.C., 1999. Solubility of paracetamol in pure solvents. J Chemical and Engineering Data. Vol. 44, pp: 1391-1395.
23
Hertel, P.; Kramer, M. and Neumann. F., 1969. Einfluß eines Antiandrogens (Cyproteronacetat) auf Knochenwachstum und Knochenreifung männlicher Ratten. Arzneim.Forsch. Vol. 19, pp: 1777-1790. In: Neumann, F., 1971. Use of cyproterone acetate in animal and clinical trials. Gynecologic and Obstetric Investigation. Vol. 2, No. 1-6, pp: 149-179.
24
Hoffmann, W.; Breuer, H. and Neumann, F., 1968. Wirkung einer Behandlung mit einem Antiandrogen (Cyproteron) auf die Aktivität von Steroidenzymen bei der Ratte. Arzneimittel-Forsch. Drug Research. Vol. 18, pp: 586-588.
25
Kalorey, D.R.; kurkure, N.V.; Ramgaonkar, I.S.; Sakhare, P.S.; Warke, S. and Nigot, N.K., 2005. Effect of polyherbal feed supplement “Growell” during induced aflatoxicosis, ochratoxicosis and combined mycotoxicoses in broilers. Poultry Science. Vol. 65, No. 12, pp: 2239-2245.
26
Khan, T.A.; Khan, M.N.; Hasan, R.; Fatima, H. and Kousar, E., 2013. Effects of Nigella sativa (black seed) on serum levels of urea and uric acid in acetaminophen induced hepatotoxicity of commercial layer chickens. Journal of World’s Poultry Research. Vol. 3, No. 4, pp: 89-92.
27
Klapáčová, K.; Faixová, Z.; Grešáková, L.; Faix, Š.; Miklósová, L. and Leng, L., 2011. Effects of feeding wheat naturally contaminated with Fusarium mycotoxins on blood biochemistry and the effectiveness of dietary lignin treatment to alleviate mycotoxin adverse effects in broiler chickens. Acta Veterinaria (Beograd). Vol. 61, No. 2/3, pp: 227-237.
28
Kren, V. and Walterova, D., 2005. Silybin and silymarin new effects and applications. Biomedical Papers. Vol. 149, No. 1, pp: 29-41.
29
Lambert, A.; Mitchell, R.M. and Robertson, W.R., 1985. On the site action of the antiadrenal steroidogenic effect of cyproterone acetate. Biochemical Pharmacology. Vol. 34, pp: 2091-2095.
30
Lang, L.; Nekam, K. and Gonzalez-Cabello, R., 1990. Hepatoprotective and immunological effects of antioxidant drugs. Torkai Journal of Experimental and Clinical Medicine. Vol. 15, No. 2-3, pp: 123-127.
31
Lindenthal, J.; Sinclair, J.F.; Howell, S.; Cargill, I.; Sinclair, P.R. and Taylor, T., 1993. Toxicity of paracetamol in cultured chick hepatocytes treated with methotrexate. European Journal of Pharmacology. Vol. 228, pp: 289-298.
32
Lstedler, R.; Galletti, S.; Tameni, M.; Sonzogni, O. and Tedesco, D., 2004. Efficacy of silymarin-phospholipid complex in reducing the toxicity of aflatoxin B1 in broiler chicks. Poultry Science. Vol. 83, pp: 43-1839.
33
Luck, M.R., 1982. Effects of an anti-androgen in the laying hen (Gallus domesticus). Reproduction. Vol. 64, No. 2, pp: 381-385.
34
Lutsenko, S.V.; Kashnikova, T.V.; Khmyrov, A.V.; Druz, E.A.; Ledeshkova, O.N.; Fel’dman, N.B.; Luzhnov, N.D. and Lutsenko, E.V, 2008. Study of the effect of a liposomal form of silymarin on biochemical indices of the blood serum and productivity of broiler chicks. Russian Agricultural Science. Vol. 34, pp: 415-417.
35
Luper, S., 1998. A review of plants used in the treatment of liver disease: Part I. Alternative Medicine Review. Vol. 3, pp: 410-421.
36
Magliulo, E.; Gagliardi, B. and Fiori, G.P., 1978. Results of a double blind study on the effect of silymarin in the treatment of acute viral hepatitis, carried out at two medical centres. Medizinische klinik. Vol. 73, pp: 1060-1065.
37
Marmat, S.; Qureshi Taj, N. and Rathore, H.S., 2015. Lethal doses of acetaminophen (Paracetamol) for young broiler chicks. Indian Journal of Pharmaceutical Sciences. Vol. 5, No. 1, pp: 23-26.
38
Marzouk, M.; Sayed, A.A. and Soliman, A.M., 2011. Hepatoprotective and antioxidant effects of Cichorium endivia L. leaves extract against acetaminophen toxicity on rats. Journal of Medicine and Medical Sciences. Vol. 2, No. 12, pp: 1273-1279.
39
Metwally, M.A.A.; El-Gellal, A.M. and El-Sawaisi, S.M., 2009. Effects of silymarin on lipid metabolism in rats. World Applied Sciences Journal. Vol. 6, No. 12, pp: 1634-1637.
40
Mohammad, F.K.; Mousa, Y.J. and Hasan, M.M., 2012. Acute toxicity and neurobehavioral effects of diphenhydramine in chicks. Journal of Poultry Science. Vol. 49, No. 1, pp: 51-56.
41
Mohan, J.; Moudgal, R.P. and Singh, N.B., 1990. Effects of cyproterone acetate and testosterone treatments on some physical parameters, angiotensin converting enzyme activity and fertilizing ability of spermatozoa of domestic cocks (Gallus domesticus). Journal of Veterinary Medicine Series A. Vol. 37, No. 1‐10, pp: 499-505.
42
Mohan, J.; Sastry, K.V.H. and Tyagi, J.S., 2002. Effects of cyproterone acetate on cloacal gland and testicular functions in Japanese quail. Indian Journal of Poultry Science. Vol. 37, No. 3, pp: 247-251.
43
Mousa, Y.J., 2009. Effect of chlorpheniramine on acute dichlorvos poisoning in chicks. Iraqi Journal of Veterinary Sciences. Vol. 23, pp: 35-43.
44
Mull, R.L.; Giri, S.N. and Peoples, S.A., 1972. Effects of an acutely toxic dose of the avicide 3-chloro-p-toluidine in chickens. Toxicology and Applied Pharmacology, Vol. 22, No. 3, pp: 458-464.
45
Muriel, P. and Moreno, M.G., 2004. Effects of silymarin and vitamins E and C on liver damage induced by prolonged biliary obstruction in the Rat. Basic & Clinical pharmacology & Toxicology. Vol. 94, pp: 99-104.
46
Neirinckx, E.; Remon, J.P.; De Backer, P.; Vervaet, C. and Croubels, S., 2006. The biopharmaceutics classification system in veterinary medicine: pH-solubility relationship of analgesic and anti-inflammatory drugs. In: Proceedings of the Tenth International EAVPT Congress. Journal of Veterinary Pharmacology and Therapeutics. Vol. 26, No. 1, pp: 287-288.
47
Neirinckx, E.; Croubels, S.; De Boever, S.; Remon, J.P.; Bosmans, T.; Daminet, S.; De Backer, P. and Vervaet, C., 2011. Species comparison of enantioselective oral bioavailability and pharmacokinetics of ketoprofen. Research in Veterinary Science, submitted for publication. Species comparison of enantioselective oral bioavailability and pharmacokinetics of ketoprofen. Research in Veterinary Science. Vol. 91, No. 3, pp: 415-421.
48
Neumann, F., 1971. Use of cyproterone acetate in animal and clinical trials. Gynecologic and Obstetric Investigation. Vol. 2, No. 1-6, pp: 149-179.
49
O’Connor, J.C.; Cook, J.C.; Slone, T.W.; Makovec, G.T.; Frame, S.R. and Davis L.G., 1998. An ongoing validation of a tier I screening battery for detecting endocrine active compounds (EACs). Toxicological Sciences. Vol. 46, pp: 45-60.
50
Ottinger, M.A.; Quinn Jr, M.J.; Lavoie, E.; Abdelnabi, M.A.; Thompson, N.; Hazelton, J.L. and Jaber, M., 2005. Consequences of endocrine disrupting chemicals on reproductive endocrine function in birds: establishing reliable end points of exposure. Domestic animal endocrinology. Vol. 29, No. 2, pp: 411-419.
51
Palani, S.; Raja, S.; Kumar, R.P.; Selvaraj, R. and Kumar, B.S., 2011. Evaluation of phyto constituents and anti-nephrotoxic and antioxidant activities of Monochoriavaginalis. Pakistan Journal of Pharmaceutical Sciences. Vol. 24, pp: 293-301.
52
Powlin, S.S., Cook, J.C., Novak, S. and O’Connor, J.C., 1998. Ex vivo and in vitro testis and ovary explants: Utility for identifying steroid biosynthesis inhibitors and comparison to a tier I screening battery. Toxicological Sciences. Vol. 46, pp: 61-74.
53
Radco, L. and Cybulski, W., 2007. Application of silymarin in human and animal medicine. Journal of Pre-Clinical and Clinical Research. Vol. 11, pp: 022-026.
54
Rastogi, R.; Srivastava, A.K. and Rastogi, A.K., 2001. Long term effect of aflatoxin B1 on lipid peroxidation in rat liver and kidney: Effect of picroliv and silymarin. Phytotherapy Research. Vol. 15, pp: 307-310.
55
Richie, J.P.Jr.; Lang, C.A. and Chen, T.S., 1992. Acetaminophen-induced depletion of glutathione and cysteine in the aging mouse kidney. Biochemical Pharmacology. Vol. 44, pp: 129-135.
56
Saleh, F. and Ezzat, A.R., 1990. Metabolic Effects of Cyproterone acetate and corticosterone in the chicken Gallus Domesticus. Qatar University Science Bulletin. Vol. 10, pp: 253-261.
57
Simon, G. and Winter, M., 1970. The effect of antihistamines on red blood cell acetylcholinesterase activity in vitro. Biochemical Pharmacology. Vol. 19, pp: 1843-1845.
58
Sonkusale, P.; Bhandarker, A.G.; Kurkare, N.V.; Ravikanth, K.; Maini, S. and Sood, D., 2011. Hepatoprotective activity of superliv liquid and repchol in CCl4 induced FLKS syndrome in broilers. International Journal of Poultry Science. Vol. 10, pp: 49-55.
59
Stahnke, N.; Ilicki, A. and Willig, R.P., 1979. Effect of cyproterone acetate (CA) on growth and endocrine function in precocious puberty. Acta Paediatrica. Vol. 68, pp: 32-40.
60
Steinbeck, H. and Neumann, F., 1971. Effect of cyproterone acetate on puberty in rats. Journal of Reproduction and Fertility. Vol. 26, No. 1, pp: 59-63.
61
Suchý, J.P.; Straková, E.; Kummer, V.; Herzig, I.; Písaříková, V.; Blechová, R. and Mašková, J., 2008. Hepatoprotective effects of milk thistle (Silybum marianum) seed cakes during the chicken broiler fattening. Acta Veterinaria Brno. Vol. 77, pp: 31-38.
62
Tedesco, D.; Steidler, S.; Galletti, S.; Tameni, M.; Sonzogni, O. and Ravarotto, L., 2004. Efficacy of silymarinphospholipid complex in reducing the toxicity of aflatoxin B1 in broiler chicks. Poultry Science. Vol. 83, pp: 1839-1184.
63
Vogel, G.; Tuchweber, B.; Trost, W. and Mengs, U., 1984. Protein by silibinin against Amanita phalloides intoxication in Beagles. Toxicology and Applied Pharmacology. Vol. 73, No. 3, pp: 355-362.
64
Wahba, S.R. and Ezzat, A.R., 1988. Histological effects of cyproterone acetate on adrenal, spleen and thymus of chickens. Egyptian Journal of Histology. Vol. 11, pp: 3-9.
65
Walsh, P.C. and Korenman, S.G., 1970. Action of antiandrogens: Preservation of 5α-reductase activity and inhibition of chromatin-dihydrotestosterone complex formation. Clinical Research. Vol. 18, pp: 126.
66
Yahyaoui, R.; Esteva, I.; Haro-Mora, J.J.; Almaraz, M.C.; Morcillo, S.; Rojo Martinez, G. and Soriguer, F., 2008. Effect of long term administration of cross-sex hormone therapy on serum and urinary uric acid in transsexual persons. Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. Vol. 93, No. 6, pp: 2230-2233.
67
Yamada, T.; Kunimatsu, T.; Sako, H.; Yabushita, S.; Sukata, T.; Okuno, Y. and Matsuo, M., 2000. Comparative evaluation of a 5-day Hershberger assay utilizing mature male rats and a pubertal male assay for detection of flutamide's antiandrogenic activity. Toxicological Sciences. Vol. 53, No. 2, pp: 289-296.
68
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه جمعیت های قورباغه آبی (Pelophylax bedriagae) با تأکید بر ویژگی های ریختی، ریخت سنجی، تولیدمثلی و بافت شناسی در زیستگاه های شمال استان خوزستان
دوزیستان ابتدایی ترین مهره داران زمینی و اولین مهره دارانی بودند که به زندگی در خشکی روی آورند. قورباغه آبی (Pelophylax bedriagae)، گروهی تک تبار از خانواده Ranidae است که همراه با جمعیت موجود در ترکیه جمعیت شمال غرب و جنوب غربی ایران را تشکیل می دهد. مطالعه حاضر در نواحی شمالی استان خوزستان با هدف بررسی صفات شاخص از نظر ریختی ، ریخت سنجی، بررسی ویژگی های تولیدمثلی و مطالعه ساختار بافتی پوست انجام شد. به همین منظور، 50 نمونه قورباغه از نواحی شمالی استان خوزستان طی فصول بهار و پاییز 1395 به صورت زنده صید و به آزمایشگاه منتقل شدند، پس از تعیین گونه، صفات ریختی و ریخت سنجی مورد بررسی قرار گرفت. طبق نتایج ریختی، سه نوع ریخت در بین نمونه ها شناسایی شد و مطابق آزمون مستقل بودن جنسیت از ریخت، ریخت سنخ و جنسیت مستقل از هم بود. هم چنین تعداد 9 صفت برای هر نمونه مورد بررسی ریخت سنجی قرار گرفت، نتایج آزمون (T-test) بین دو جنس نر و ماده نشان داد که در تمامی صفات، به جز طول ران و اندام جلویی، تفاوت معنی دار وجود دارد. نتایج برای آزمون T2 Hotelling نشان داد بین جنسیت نر و ماده دو ریختی جنسی وجود دارد. با این وجود نتایج آنالیز واریانس چند متغیره جدایی جمعیت در جنسیت نر و عدم جدایی جمعیت را در جنس ماده نشان داد. در بخش مطالعه ویژگیهای تولید مثلی، بیش ترین توان تولیدمثلی برای هر دو جنس نر و ماده در فصل بهار مشاهده شد. در بررسی ساختار پوستی در دو ناحیه پشتی و شکمی، اگرچه در هر دو ناحیه طبقات اپیدرم و درم وجود داشت اما رشته های کلاژن در سطح شکمی نازک تر از سطح پشتی بودند.
http://www.aejournal.ir/article_106180_46bd2eb49dac11cff900130d545a2e4b.pdf
2020-06-21
101
110
10.22034/aej.2020.106180
قورباغه آبی
چندریختی رنگی
دو ریختی جنسی
شرایط اکولوژیکی
نواحی شمالی استان خوزستان
اشرف
جزایری
jazayeriashraf@ymail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
فهیمه
صابری
fahime.saberi.1991@gmail.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
طیبه
محمدی
t.mahammadi@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
ابراهیم نژاد، م.، 1385. زیست شناسی مهره داران. انتشارات دانشگاه تهران. ویرایش دوم. 175 صفحه.
1
بلوچ، م. و کمی، ح.ق.، 1385. دوزیستان ایران. انتشارات دانشگاه تهران. صفحات 153 و 155.
2
پاپهن، ف.؛ اسمعیلیان، ا.؛ درست قول، م. و دژمان، م.، 1395. بررسی مورفولوژیک، مورفومتریک، هیستولوژیک و هیستومتریک قورباغه مردابی Pelophylax ridibundus در شهر اهواز (منطقه گرم) و مقایسه آن با شهر شهرکرد (منطقه سرد). فصلنامه محیط زیست جانوری. جلد 8، شماره 3، صفحات 61 تا 70.
3
پسرکلو، ع.؛ قارزی، ا.؛ کمی، ح.ق. و همایونی، م.، 1390. مطالعه چندریختی رنگی در قورباغه مردابی Rana ridibunda در استان گلستان. مجله زیست شناسی ایران. جلد 24، شماره 3، صفحات 455 تا 446.
4
حجتی، و.؛ مقدس، د. و فقیری، ا.، 1388. شناسایی دوزیستان و خزندگان پارک ملی شهید زارع ساری. فصلنامه زیست شناسی تجربی دانشگاه آزاد اسلامی واحد دامغان. جلد 1، شماره 3، صفحات 86 تا 98.
5
درویش، ج.، 1389. جمعیت ها، گونه ها و تکامل. ویرایش جدید. مایر. انتشارات دانشگاه فردوسی. مشهد. صفحات 329 تا 334.
6
دلاورشیداجلالی، ح.؛ حسینی خاله جیر، غ.؛ جمال زاده، ح. و کمی، ح.ق.، 1396. بررسی تنوع زیستی دوزیستان در شرق استان گیلان. فصلنامه محیط زیست جانوری. جلد 9، شماره 2، صفحات 130 تا 140.
7
فکوری، ص.؛ جمال زاده، ح. و اسدیان نارنجی، س.، 1392. مطالعه چندریختی رنگی در قورباغه مردابی Rana ridibunda در تالاب بین المللی امیرکلایه گیلان. اولین همایش سراسری محیط زیست، انرژی و پدافند زیستی. روه ترویجی دوستداران محیط زیست، موسسه آموزش عالی مهر اروند با همکاری دانشگاه آزاد میبد و قرارگاه پدافند زیستی کشور. تهران.
8
میرزاجانی، ع.؛ کیابی، ب. و باقری، س.، 1385. بررسی رشد لارو قورباغه مردابی و برآورد جمعیت گونه Pelophylax ridibundus در تالاب انزلی. مجله زیست شناسی ایران. جلد 19، شماره 2، صفحات 191 تا 202.
9
نجیب زاده، م.؛ درویش، ج.؛ کمی، ح.ق. و قاسم زاده، ف.، 1393. مقایسه زیستگاه، رفتار جفتگیری و تخم ریزی سه گونه از دوزیستان بیدم قورباغه مردابی Rana (Pelophylax) ridibunda، قورباغه درختی Hyla savignyi و وزغ سبز Bufo (Pseudepidalea) variabilis در استان لرستان. مجله زیست شناسی ایران. جلد 27، شماره 2، صفحات 291 تا 299.
10
هاشمی نژاد. ر.؛ کمی، ح.ق. و دوریش، ج.، 1385. مطالعه بیوسیستماتیکی دوزیستان بی دم استان مازندران و بررسی شرایط اکولوژیکی زیستگاه آنها. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده علوم. دانشگاه فردوسی. مشهد. 137 صفحه.
11
هزاوه، ن.؛ قاسم زاده، ف. و درویش، ج.، 1386. بررسی بیوسیستماتیک (مورفولوژی، کاریولوژی و مورفومتری) دوزیستان بی دم (Anura) استان مرکزی. مجله زیست شناسی ایران. جلد 20، شماره4، صفحات 458 تا 467.
12
Al-Barazengy, A.N.; Salman, A.O. and Hameed, F.T.A., 2015. Updated list of amphibians and reptiles in Iraq 2014. Bull. Iraq nat. Hist. Mus. Vol. 13, No. 4, pp: 29-40.
13
Azevedo, R.A.; de Jesus Santana, A.S. and de BritoGitirana, L., 2006. Dermal collagen organization in Bufo ictericus and in Rana catesbeiana integument (Anuran, Amphibian) under the evaluation of laser confocal microscopy. Micron. Vol. 37, No. 3, pp: 223-228.
14
Cayuela, H.; Cheylan, M. and Joly, P., 2011. The best of a harsh lot in a specialized species: breeding habitat use by the yellow-bellied toad (Bombina variegata) on rocky river banks. Amphibia-Reptilia. Vol. 32, No. 4, pp: 533-539.
15
Dubey, S. and Roulin, A., 2014. Evolutionary and biomedical consequences of internal melanins. Pigment cell & melanoma research. Vol. 27, No. 3, pp: 327-338.
16
Duellman, W.E., 1999. Global distribution of amphibians: patterns, conservation, and future challenges: Johns Hopkins University Press. Baltimore. MD. USA. Vol. 2, No. 3, pp: 124.
17
Flores‐Nava, A. and Vera‐Muñoz, P., 1999. Growth, metamorphosis and feeding behaviour of Rana catesbeiana Shaw 1802 tadpoles at different rearing densities. Aquaculture Research. Vol. 30, No. 5, pp: 341-347.
18
Harley, C.D.G.; Pankey, M.S.; Wares, J.P.; Grosberg, R.K. and Wonham, M.J., 2006. Color polymorphism and genetic structure in the sea star Pisaster ochraceus. The Biological Bulletin. Vol. 211, No. 3, pp: 248-262.
19
Hoffman, E.A. and Blouin, M.S., 2000. A review of colour and pattern polymorphisms in anurans. Biological Journal of the Linnean Society. Vol. 70, No. 4, pp: 633-665.
20
Ishchenko, V.G., 2014. Ecological mechanisms determining stability of color polymorphism in the population of moor frog, Rana arvalis Nilss. Russian Journal of Herpetology. Vol. 1, No. 2, pp: 117-120.
21
Kazemi, S.M.; Rastegar-Pouyani, E.; Shafiei Darabi, S.A.; Ebrahim Tehrani, M.; Hosseinzadeh, MS.; Mashayekhi, M. and et al., 2015. Annotated checklist of amphibians and reptiles of Qom Province. central Iran. Iranian Journal of Animal Biosystematics. Vol. 11, No. 1, pp: 23-31.
22
Kime, N.M.; Whitney, T.K.; Ryan, M.J. Rand Marler, C.A., 2010. Treatment with arginine vasotocin alters mating calls and decreases call attractiveness in male túngara frogs. General and comparative endocrinology. Vol. 165, No. 2, pp: 221-228.
23
Lind, M. and Johansson, F., 2007. The degree of adaptive phenotypic plasticity is correlated with the spatial environmental heterogeneity experienced by island populations of Rana temporaria. Journal of evolutionary biology. Vol. 20, No. 4, pp: 1288-97.
24
Measey, G.J.; Vimercati, G.; De Villiers, F.A.; Mokhatla, M.M.; Davies, S.J. and Edwards, S., 2015. Frog eat frog: exploring variables influencing anurophagy. Journal of Peer. Vol. 3, No. 12, pp: 1-14.
25
Mirzajani, A.; Kiabi, B. and bagheri, S., 2006. study of larvae Growth of Rana ridibunda species in Anzali wetland. Journal of Iranian Biology. Vol. 19, No. 2, pp: 191-202.
26
Pesarakloo, A.; Rastegar-Pouyani, E.; Rastegar-Pouyani, N.; Kami, H.Gh.; Najibzadeh, M. and Khosravani, A., 2017. The first taxonomic revaluation of the Iranian water frogs of the genus Pelophylax (Anura: Ranidae) using sequences of the mitochondrial genome. Mitochondrial DNA Part A. Vol. 28, No. 3, pp: 392-398.
27
Trocchia, S., 2014. The Sarno river and the bio-preservation of species of the genus Pelophylax. Journal of Zoology. Vol. 119. No. 1, pp: 8-25.
28
Tsuji, H., 2004. Reproductive ecology and mating success of male Limnonectes kuhlii, a fanged frog from Taiwan. Herpetologica. Vol. 60, No. 2, pp: 155-167.
29
Watters, J.L.; Cummings, S.T.; Flanagan, R.L. and Siler, C.D., 2016. Review of morphometric measurements used in anuran species descriptions and recommendations for a standardized approach. Zoo taxa. Vol. 4027, No. 4, pp: 477-495.
30
Zhelev, Z.M.; Arnaudov, A. and Boyadzhiev, P., 2015. Ecological status of the sazliyka river and its tributaries (blatnitsa and sokolitsa) as indicated by the color polymorphism and sexual composition of the populations Pelophylax ridibundus (amphibia: Ranidae). Bulgarian Journal of Agricultural Science. Vol. 21, No. 6, pp: 1148-1156.
31
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی رژیم غذایی ماهی گیش دم زرد (1833 ,Atule mate (Cuvier در خلیج فارس و دریای عمان (استان هرمزگان)
این مطالعه به منظور بررسی رژیم غذایی ماهی گیش دم زرد (Atule mate) در آب های خلیج فارس و دریای عمان (استان هرمزگان) انجام شد. نمونه برداری ها به مدت 12 ماه از آذرماه 1395 تا آبان ماه 1396 صورت پذیرفت و نمونه برداری با تورهای گوشگیر ماهانه و فصلی انجام شد. جهت بررسی رژیم غذایی تعداد 447 قطعه ماهی نمونه گیری شده و شاخص GaSI، شاخص تهی بودن معده (CV)، شاخص ترجیح غذایی (FP) و درصد فراوانی اقلام غذایی تخمین زده شد. شاخص GaSI نشان داد اوج تغذیه این گونه در خردادماه است. میزان شاخص تهی بودن معده (CV)، برای این گونه در طول تحقیق 65/32% به دست آمد. با توجه به ماهیان استخوانی (موتوماهیان و ساردین ماهیان) موجود در معده این ماهی، گونه موتومنقوط (Encrasicholina punctifer) بهعنوان غذای اصلی برای گیش دم زرد و ماهی جنس ساردینلا (Sardinella sp) را می توان به عنوان غذای فرعی و سایر گونه های خورده شده که عبارت بودند از اسکویید و خرچنگ را می توان به عنوان غذای تصادفی عنوان نمود. با توجه به تنوع گونه ای گیش ماهیان و اهمیت ارتباط زنجیره های غذایی، پیشنهاد می گردد. محتویات معده گونه های خانواده گیش ماهیان مورد بررسی جامع قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_106207_7af0a2af13a713d87bfb19ebdbf53250.pdf
2020-06-21
111
116
10.22034/aej.2020.106207
رژیم غذایی
خلیجفارس و دریای عمان
ماهی گیش دم زرد (A. mate)
ترجیح غذایی (FP)
اصغر
نجفی نسب
asgharnajafi1347@gmail.com
1
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد علوم وتحقیقات، دانشگاه آزاداسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
احسان
کامرانی
ezas47@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
فرهاد
کی مرام
farhadkaymaram@gmail.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
سید محمدرضا
فاطمی
reza_fatemi@hotmail.com
4
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد علوم وتحقیقات، دانشگاه آزاداسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
احسان
رمضانی فرد
eramezanifard@gmail.com
5
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد علوم وتحقیقات، دانشگاه آزاداسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
اسدی، ه. و دهقانی پشترودی، ر.، 1375. اطلس ماهیان خلیج فارس و دریای عمان. سازمان تحقیقات آموزش و ترویج جهادکشاورزی.
1
حسینی، ع.، 1387. رشد عادات تغذیه ای و بیولوژی تولیدمثل در ماهی کوتر ساده در آبهای استان بوشهر. پایان نامه دکتری رشته بیولوژی دریا. دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر. 118 صفحه.
2
دقوقی، ب.؛ مومنی، م.؛ درویشی، م.؛ بهزادی، س. و سالارپوری، ع.، 1388. گزارش نهایی پروژه بررسی رژیم غذایی تون ماهیان و ساردین ماهیان غالب در غرب دریای عمان. گزارش نهایی پروژه. انتشارات موسسه تحقیقات شیلات ایران. 117صفحه
3
دوستدار، م.؛ دریانبرد، غ.؛ وثوقی، غ.؛ کاظمیان، م. و رحمتی، ر.، 1388. بررسی رژیم غذایی طبیعی ماهی گیش کاذب درآب های ساحلی دریای عمان. مجله دامپزشکی دانشگاه آزاداسلامی. شماره 12، صفحات 32 تا 37.
4
سالنامهآماری سازمان شیلات ایران. 1393. معاونت برنامه ریزی و مدیریت منابع. دفتر برنامه ریزی و بودجه. 64 صفحه.
5
صادقی، م.س.؛ ابدالی، س. و معنوی، ا.، 1393. بررسی رژیم غذایی ماهی گیش خال سفید در آب های استان هرمزگان. مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. سال 9، شماره 1، صفحات 69 تا 78.
6
صدیق، زاده، ز.؛ وثوقی، غ.؛ ولی نسب، ت. و فاطمی، م.ر.، 1386 . مروری بر ریخت شناسی اتولیت در برخی از ماهیان اقتصادی سطح زی خلیج فارس. مجله دامپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی. سال 3، شماره 35، صفحات 3 تا 35.
7
کمالی، ع.؛ دهقانی، ر.؛ درویشی م. و حسینی س.ع.، ۱۳۹۵. بررسی تغذیه طبیعی ماهی گیش پوزه دراز Carangoide schrysophorys در آب های استان هرمزگان. چهارمین همایش ملی شیلات و آبزیان ایران، بندرعباس. دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس.
8
کی مرام، ف.، 1379. پویایی شناسی و مدیریت جمعیت تون زرد باله (Thunnus albacares) در دریای عمان. پایان نامه دکتری بیولوژی ماهیان دریا. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران.
9
وثوقی، غ. و مستجیر، ب.، 1379. ماهیان آب شیرین. انتشارات دانشگاه تهران. شماره 2132. چاپ چهارم.
10
Al-Rasady, I.; Govender, A. and Al-Jufaili, S.M., 2012. Reproductive biology of longnose trevally (Carangoides chrysophrys) in the Arabian Sea, Oman. Environmental biology of fishes. Vol. 93, No. 2, pp: 177-184.
11
Bartulovic, V.; Lucic, D.; Conides, A.; Glamuzina, B.; Dulcic, J.; Hafner, D. and Batistic, M., 2004. Food of sand smelt, Atherina boyeri Risso, 1810 (Pisces: Atherinidae) in the estuary of the Mala Neretva River (Croatia). Journal of Marine Sciences. Vol. 68, pp: 597-603.
12
Berry, F.H.; Moberly, J.B. and Smith-Vaniz, W.F., 1981. Identification of trevallys or crevalles (genus Caranx) of the Indian and Pacific Oceans. International Game Fish Association.
13
Carpenter, K.E.; krupp, F.; Jones, D.A. and Zajons, U., 1997. Identification guide for fishery surpose the living marine resources of Kuwait, Eastern Saudi Arabia. Baharain. Qatar and the United arab emirates. Rome, FAO. 293 p.
14
Dadzie, F.; Abou- Seedo, F. and Al-Qatton, E., 2002. The food and feeding habits of the silver pomfert, Pampus argentus, (Eupharsen) in Kuwait waters. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 16, pp: 61-67.
15
Desai, V.R., 1970. Studies on Fishery and biology of tortor (Hamilton) From river Narmada, J. Inland Fish soc. India. Vol. 2, pp: 101-112.
16
Euzen, E., 1987. Food habits and diet composition of some fish of Kuwait. Bulletin Science. Vol. 9, pp: 65-86.
17
Fischer, W. and Bianchi, G., 1984. FAO Species identification sheets, fishing area 51, west Indian Ocean.
18
James, P.S.B.R., 1986. The percent status of ribbon fish in India, special publication N. 24, Central Marine Fisheries Research Institute.
19
Kingston, S.D.; Venkataramani, V.K. and Venkataramanujam, K., 1999. Food habits and feeding intensity of finlet scad Atule mate (Teleostei) off Gulf of mannar, Southest Coast of India.indian journal of marine sciences. Vol. 28, pp: 307-311.
20
Kulbickil, M.; Bozec, Y.; Labrosse. P.; Letourneur, Y.; Mou-Thum, G. and Wantiez, L., 2005. Diet composition of carnivorous fishes from coral reef langons. Vol. 18, pp: 231-250.
21
Lagler, K.F.; Bardach, J.E. and miller, R.R., 1962. Ichthyoligy. ls ted. John wiley & sons, Newyork. 545 p.
22
Mazzoni, R.; Moraes, M.; Rezende, C.F. and Iglesias Rios, R., 2010. Diet and feeding daily rhythm of Pimelodella lateristriga (Osteichthyes, Siluriformes) in a coastal stream from Serra do Mar - RJ. Brazilian Journal of Biology. Vol. 70, No. 4, pp: 1123-1128.
23
Mohsin, A.K.M. and Ambak, M.A., 1996. Marine fishes and fisheries of Malaysia and neighbouring countries. UniversityPertanian Malaysia. 744 p.
24
Moyle, P.H. and Cech, J.J, 1996. Fishes: An Introduction to Ichthyology. New Jersey: prentice hall. 590 p.
25
Pikitch, E.K.; Boersma, P.D.; Boyd, I.L.; Conover, D.O.; Cury, P.; Essington, T.E.; Heppell, S.S.; Houde, E.D.; Mangel, M.; Pauly, D.; Plaganyi, E.E.; Sainsbury, K. and Steneck, R.S., 2012.Little fish, big impact: Managing a crucial link in ocean food-webs. Len fest Ocean Program, Washington, D.C. 108 p.
26
Sivakami, S., 1995. Fishery and biology of the Carangidae of Cochin. J of the Marine Biological Association of India. Vol. 37, No. 1-2, pp: 237-248.
27
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه برخی از پارامترهای بیوشیمیایی و اسپرم شناختی فیل ماهی (Huso huso) و اوزون برون (Acipenser stellatus)
در این مطالعه خصوصیات حرکتی (طول دوره تحرک و درصد تحرک اسپرم)، اسپرماتوکریت، تراکم اسپرم و برخی از فاکتورهای بیولوژیکی اسپرم شامل شاخصهای پلاسمای سمینال (ترکیبات یونی و آلی) در 7 مولد فیل ماهی و 7 مولد اوزون برون وحشی مورد بررسی قرار گرفت. طول دوره تحرک اسپرم (s)، درصد تحرک اسپرم (%)، اسپرماتوکریت (%) و تراکم اسپرم (109×) در فیل ماهی به ترتیب 30/65±310، 4/31±93/11، 0/31±2/87، 0/36±2/76 و در ماهی اوزون برون به ترتیب 23/61±81، 3/270±80/63، 0/23±2/63، 0/28±2/40 اندازه گیری شد.غلظت های یون سدیم، پتاسیم، کلسیم و منیزیم در فیل ماهی به ترتیب 8/47±96/24، 0/40±3/34، 0/44±8/66، 0/15±1/23 میلی مول در لیتر و در اوزو نبرون به ترتیب 8/40±95/33، 0/28±4/23، 0/47±8/43، 0/24±2/39 میلی مول در لیتر بود. غلظت کلسترول و گلوکز در سرم فیل ماهی به ترتیب 6/77±12/98، 2/47±30/67 میلی گرم در دسی لیتر و در اوزون برون به ترتیب 5/78±45/68، 1/66±30/43 میلی گرم در دسی لیتر بود. هم چنین پلاسمای سمینال در فیل ماهی و اوزون برون به ترتیب دارای 0/27±1/45، 0/29±1/49 گرم در دسی لیتر پروتئین بود. نتایج حاصل از این مطالعه نشان داد که بین طول دوره تحرک، درصد تحرک اسپرم و میزان غلظت یون منیزیم در فیل ماهی و اوزون برون اختلاف معنی داری وجود دارد. نتایج این تحقیق نشان می دهد که فیل ماهی نسبت به اوزون برون دارای کیفیت و کمیت اسپرم بالاتری هستند. به علاوه، میزان غلظت یون منیزیم که در اوزون برون بیش تر از فیل ماهی است، اما تفاوت معنی داری میان سایر پارامترهای بیوشیمیایی میان دو گونه مشاهده نشد.
http://www.aejournal.ir/article_106214_eda41404b2b846eba5bf060d6d4046d4.pdf
2020-06-21
117
122
10.22034/aej.2020.106214
فیل ماهی
اوزون برون
پارامترهای اسپرم شناختی
پارامترهای بیوشیمیایی
علی
صادقی
sadeghi.a_shilat@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
سجاد
پورمظفر
sajjad5550@gmail.com
2
ایستگاه تحقیقاتی نرمتنان خلیج فارس، موسسه تحقیقات شیلات ایران، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندر لنگه، ایران
LEAD_AUTHOR
محسن
گذری
gozari2020@gmail.com
3
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
احمدی، م.ر.؛ لباسی، م.ر.؛ حسینی، ش. و لرستانی، ر.، 1387. ارزیابی غلظت اسپرم، اثر رقیق کنندهها و میزان pH آن ها بر تحرک اسپرم کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله علوم و فنون دریایی. سال 7، شماره 1 و 2، صفحات 13 تا 19.
1
اسلامبولچی، ش.، 1377. تخمین تراکم اسپرم ماهی کپور معمولی، آمور و ازون برون با استفاده از روش اسپکتروفتومتری. پایان نامه کارشناسی. دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 50 صفحه.
2
برادران نویری، ش.؛ علیپور، ع.ر. و پورکاظمی، م.، 1385. بررسی خصوصیات مورفولوژی، تراکم اسپرم و اسپرماتوکریت
3
تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus) در جنوب غرب دریای خزر. نشریه امور دام و آبزیان. شماره 75، صفحات 138 تا 144.
4
برادراننویری، ش.؛ نوری، ا.؛ بهمنی، م.؛ یزدانیساداتی، م.ع. و اکبرزاده، آ.، 1396. اثر دو نوع رقیقکننده بر شاخصهای تحرک اسپرم ماهی بستر (Huso huso×Acipenser ruthenus) طی نگه داری بلندمدت. نشریه فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان. سال 5، شماره 4، صفحات 58 تا 72.
5
برادران نویری، ش. و حسن زاده صابر، م.، 1397. روش های ارزیابی کیفیت اسپرم ماهیان. نشریه توسعه آبزی پروری. سال 12، شماره 3، صفحات 15 تا 29.
6
بهمنی، م.؛ یوسفی جوردهی، ا.؛ کاظمی، ر.ا.؛ پوردهقانی، م.؛ حلاجیان، ع.؛ دژندیان، س. و جلیل پور، ج.، 1391. بیوتکنیک مولدسازی، تکثیر مصنوعی و مطالعه برخی شاخص های فیزیولوژیک تاس ماهی شیپ پرورشی (Acipenser nudiventris). مجله علمی شیلات ایران. سال 21، شماره 3، صفحات 1 تا 12.
7
خارا. ح.؛ برادران نویری، ش.؛ دادرس، ح.؛ رهبر، م.؛ احمدنژاد، م.؛ علی نیا، م. و خدادوست، ع.، 1391. اثر برخی یون ها روی فعالیت اسپرم و کارایی تکثیر مصنوعی ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio). مجله بهره برداری و پرورش آبزیان. جلد 1، شماره 3، صفحات 45 تا 64.
8
علیپورجورشری، ع.ر.، 1394. کاربرد روش های شمارش عددی، اسپرماتوکریت و طیف سنجی تراکم اسپرم در ماهیان با تأکید بر ماهی ازون برون (Acipenser stellatus). نشریه آبزیان زینتی. سال 2، شماره 4، صفحات 33 تا 40.
9
علیپور، ع.ر.؛ برادران نویری، ش.؛ نوروزفشخامی، م.ر؛ آذری تاکامی، ق. و وهابزاده، ح.، 1391. بررسی خصوصیات ریخت شناسی و تراکم اسپرم تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus) از طریق اسپرماتوکریت، شمارش عددی و طیف سنجی. نشریه زیست شناسی دریا. سال 4، شماره 15، صفحات 1 تا 11.
10
قرایی، ا.؛ علیزاده سرگزی، ع.؛ غفاری، م. و میردارهریجانی، ج.، 1394. تأثیر محلول های رقیق کننده اسپرم بر شاخص های اسپرم شناختی و عملکرد لقاح در ماهی سفیدک سیستان (Schizothorax zarudnyi). نشریه علوم آبزی پروری. سال سوم، شماره 4، صفحات 17 تا 30.
11
محمدی، ق.ا.؛ مصباح، م.؛ خواجه، غ.ح. و ممبینی، آ.، 1396. خصوصیات میلت ماهی کپور پرورشی (Cyprinus carpio) در استان خوزستان. نشریه زیست شناسی دریا. سال 9، شماره 36، صفحات 93 تا 100.
12
Alavi, S.M.H.; Cosson, J. and Kazemi, R., 2006. Semen characteristics in Acipenser persicus in relation to sequential stripping. Journal of Fish Biology. Vol. 22, pp: 400-405.
13
Alavi, S.M.H.; Mojazi, A.B.; Cosson, J.; Karami, M.; Pourkazemi, M. and Akhoundzadeh, M.A., 2006. Determination of some seminal plasms indices, sperm density and motility in the Persian sturgeon Acipenser persicus. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 5, pp: 19-40.
14
Barannikova, I.A., 1995. Measures to maintain sturgeon fisheries under conditions of ecosystem change. In: Proc. Intern. S turg. Symp., Vniro Pub. Vol. 12, pp: 124-130.
15
Billard, R., 2015. Spermatogenesis and spermatology of some teleost fish species. Reprod Nutr Dev. Vol. 2, pp: 877-920.
16
Billard, R.; Cosson, J.; Perchec, G. and Linhart, O., 2015. Biology of sperm and artificial reproduction in carp. Aquaculture. Vol. 124, pp: 95-112.
17
Billard, R., 2015. Biology and Control of Reproduction of Sturgeons in Fish Farm. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 2, pp: 1-20.
18
Cosson, J. and Linhart, O., 1996. Paddlefish, Polyodon spathula, spermatozoa: effects of potassium and pH on motility. Folia Zool. Vol. 45, pp: 36-45.
19
Cosson, J.; Billard, R.; Cibert, C.; Dreanno, C.; Linhart, O. and Suquet, M., 1997. Movements of fish sperm flagella studied by high speed video microscopy coupled to computer assisted image analysis. Pol Arch Hydrobiol. Vol. 44, pp: 103-112.
20
Cosson, J.; Billard, R.; Dreanno, C., Suquet, M. and Cibert, C., 1999. Regulation of axonemal wave parameters of fish spermatozoa by ionic factors. In the Mail Gamete from Basic Knowledege to Clinical Applications. Vienna, USA. pp: 161- 186.
21
Cosson, J.; Linhart, O.; Mims, S.D.; Shelton, W.L. and Rodina, M., 2000. Analysis of motility parameters from paddlefish and shovelnose sturgeon spermatozoa. Journal of Fish Biology. Vol. 56, pp: 1348-1367.
22
Fitzpatrick, J.L.; Henry, J.C.; Leily, N.R. and Devlin, R.H., 2005. Sperm characteristics and fertilization success of Masculinize coho salmon Oncorhynchus kisutch. Aquaculture. Vol. 249, pp: 459-468.
23
Garcia, A. and Diaz, M.V., 2015. Culture of Seriola dumerilii. Cah. Options Mediterr. Vol. 16, pp: 103-114.
24
He, S. and Jenkins, K., 2004. Activation of sperm motility in striped bass via a CAMP-independent pathway. Theriogenology. Vol. 61, pp: 1487-1498.
25
Morisawa, M.; Suzuki, K.; Shimizu, H.; Morisawa, S. and Yasuda, K., 2010. Effect of osmolality and potassium on motility of spermatozoa from freshwater cyprinid fishes. J Exp Zool. Vol. 107, pp: 95-103.
26
Primavera, J.H. and Quinitio, E.T., 2014. Runt-Deformity syndrome in cultured giant tiger prawn Penaeus monodon. Journal of Crustacean Biology. Vol. 20, pp: 796-802.
27
Rideout, R.M.; Trippel, E.A. and Litvak, M.K., 2012. Relationship between sperm density, spermatocrit, sperm motility and spawning date in wild and cultured haddock. Journal of Fish Biology. Vol. 65, pp: 319-332.
28
Rurangwa, E.; Kime, D.E.; Ollevier, F. and Nash, J.P., 2014. Measurement of sperm motility and factors affecting sperm quality in cultured fish. Aquaculture. Vol. 234, pp: 1-28.
29
Secer, S.; Tekin, N.; Bozkurt, Y.; Bukan, N. and Akcay, M., 2004. Correlation between biochemical and spermatological parameters in rainbow trout semen. Israel. Vol. 56, pp: 274-280.
30
Tabares, J.; Ruiz, T.; Arboleda, L. and Olivera, M., 2007. Effect of some ions on sperm activation in (Brycon henna). Acta Biológica Colombiana. Vol. 12, No. 1, pp: 87-98.
31
Turner, E. and Montgomerie, R., 2002. Ovarian fluid enhances sperm movement in Arctic charr. Journal of Fish Biology. Vol. 60, pp: 1570-1579.
32
White, L. and Macleod, J., 2010. Composition and physiology of semen. In: Hartman, C.G., Mechanisms Concerned with Conception. Perrgamon Press, Lond. pp: 135-172.
33
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات استفاده از مولتی آنزیم آپسوزایم و بتائین در جیره بر برخی شاخص های خونی و ترکیب لاشه در فیل ماهی (Huso huso)
در این آزمایش اثر مولتی آنزیم آپسوزایم و بتایین به صورت مجزا و ترکیبی بر برخی شاخص های خونی و ترکیب لاشه در فیل ماهی (Huso huso) مورد بررسی قرار گرفت. بدین منظور، 126 قطعه فیل ماهی با میانگین وزنی 3±32 گرم به مدت 8 هفته با جیره های آزمایشی حاوی سطوح مختلف 0، 1 و 1/5 درصد بتایین به صورت ترکیبی با سطوح 0، 250 و 500 میلی گرم آپسوزایم بر کیلوگرم غذا تغذیه شدند. در انتهای دوره شاخص های بیوشیمیایی خون و سنجش ترکیب لاشه ماهیان براساس روش های رایج خون شناسی و سنجش ترکیب لاشه اندازه گیری شدند. بر اساس نتایج حاصل از آنالیز داده ها تعداد گلبول های سفید اختلاف معنی داری را بین تیمارها نشان داد (0/05>P). اگرچه در تیمارهای مجزای آپسوزایم و مولتی آنزیم اختلافی بین تیمارهای آزمایشی مشاهده نشد، اما در تیمارهای ترکیبی افزایش معنی دار تعداد گلبول های سفید مشاهده گردید (0/05>P). تعداد گلبول های قرمز، هموگلوبین، هماتوکریت، MCV، MCH و MCHC اختلاف معنی داری را در تیمارهای مختلف نشان نداد (0/05<P). داده های سنجش لاشه نشان داد که از نظر درصد چربی، پروتئین، خاکستر و رطوبت اختلاف معنی داری در تیمارهای آزمایشی مشاهده نشد (0/05<P). بنابراین، می توان نتیجه گرفت که استفاده از بتائین و مولتی آنزیم آپسوزایم تأثیر معنی داری بر شاخص های بیوشیمیایی خون و ترکیب لاشه فیل ماهی ندارد.
http://www.aejournal.ir/article_106227_20d173c311e81e49c9c7ff40ce6ce0b0.pdf
2020-06-21
123
128
10.22034/aej.2020.106227
آپسوزایم
بتایین
فیل ماهی
محمد
همایونی
mohammadhomayouni7292@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
رقیه
صفری
fisheriessafari@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
محمدرضا
ایمانپور
imanpour@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
فاطمه
کیاپور
f.kiapour@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
حبیب الله
سنچولی
sanchuli@yahoo.com
5
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
بهاره
شکوهیان
shokuhian@yahoo.com
6
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
اکبری،م.؛ سوری نژاد،ا.؛قرایی، و.؛ جوهری، ع. و عفت پناه، ا.، 1396. شاخص های رشد و ترکیب شیمیایی بدن بچه ماهی سوف معمولی (Sander lucioperca) تحت تأثیر جاذب غذایی بتائین در جیره. فصلنامه زیست شناسی جانوری، دوره 5، شماره 4، صفحات 88 تا 79.
1
حاجاتی، ح. و صفایی، ا.، 1396. مباحث علمی و کاربردی استفاده از آنزیم ها در تغذیه طیور. انتشارات دانشگاه فردوسی. 100 صفحه.
2
طاعتی، ر. و صالحی، م.، 1397. مقایسه شاخص های خونی و بیوشیمیایی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) تغذیه شده با سطوح مجزا و توأم مولتی آنزیم های تجاری. نشریه پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. دوره 6، شماره2، صفحات134 تا 119.
3
عادلیان، م.؛ ایمانپور، م.؛ تقی زاده، و. و مازندرانی،م.، 1395. استفاده از مولتی آنزیم ناتوزیم در جیره غذایی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) و اثرات آن بر شاخص های رشد و برخی از فاکتورهای بیوشیمیایی خون. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 8، شماره 2، صفحات 207 تا 214.
4
محسنی، م.؛ پورکاظمی، م.؛ سیدحسینی، م. و پورعلی، ح.، 1395. تأثیر سطوح مختلف بتائین جیره غذایی بر رشد، ترکیب لاشه و برخی فراسنجه های خون شناسی و بیوشیمیایی سرم خون بچه فیل ماهی پرورشی (Huso huso). نشریه پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. دوره 4، شماره 3، صفحات 65 تا 80.
5
AOAC. 1989. Association of Official Analytical Chemists (AOAC). Official Method of Analysis of the Association of Official Analytical Chemists, 15th ed. Association of Official Analytical Chemists, Arlington, VA, USA. 374 p.
6
Bela, Z. and Prasad, R., 2008. Impact of pollution on fresh and marine water resources. Journal of Pollution Research. Vol. 273, pp: 461-466.
7
Borges, A.; Scotti, L.V.; Siqueira, D.R.; Jurinitz D.F. and Wassermann, G.F., 2004. Hematologic and serum biochemical values for Jundia (Rhamdia quelen). Fish Physiology and Biochemical. Vol. 30, pp: 21-25.
8
Eklund, M.; Bauer, E.; Wamatu, J. and Mosenthin, R., 2005. Potential nutritional and physiological functions of betaine in livestock. Nutrition Research Reviews. Vol. 18, pp: 31-48.
9
Genc, M.A.; Tekelioglu, N.; Yilmaz, E.; Hunt, A.O. and Yanar, Y., 2006. Effect of dietary Betaine on growth performance and body composition of (Oreochromis aureus) reared in fresh and sea water a comparative study. J of Animal and Veterinary Advances. Vol. 5, No. 12, pp: 1185-1188.
10
Halver, J.E. and Hardy, R.W., 2002. Fish nutrition: Academic press.
11
Harpaz, S., 1996. Enhancement of growth in juvenile freshwater prawns (Macrobrachium rosenbergii) through the use of a chemo attractant. Journal of Aquaculture. Vol. 156, No. 3-4, pp: 225-231.
12
Hosseinifard, S.M.; Ghobadi, S.H.; Khodabakhsh, E. and Razeghi Mansour, M., 2013. The effect of different levels of soybean meals and avizyme enzyme supplement on hematological and biochemical parameters of serum in rainbow trout. Iranian Veterinary Journal. Vol. 9, No. 3, pp: 43-53.
13
Kazemi, R.; Pourdehghani, M.; Yousefi Jourdehi, A.; Yarmohammadi, M. and Nasri Tajan, M., 2010. Cardiovascular system physiology of aquatic animals and applied techniques of fish hematology Bazargan Press, Rasht. 194 p.
14
Knowles, S.; Hrubec, T.C.; Smith, S.A. and Bakal, R.S., 2006. Hematology and plasma chemistry reference intervals for cultured shortnose (Acipenser brevirostrum). Veterinary Clinical Pathology. Vol. 35, No. 4, pp: 434-440.
15
Mazandarani, M.; Taghizadeh, A.; Adelian, M. and Imanpour, M., 2009. The use of Natuzyme multi-enzyme in common carp (Cyprinus carpio) diet and its effect on gonadosomatic index. Second National Conference on Fisheries and Aquaculture in Iran, Islamic Azad University, Bandar Abbas Branch, Iran.
16
Mohammadbeygi, M.; Imanpour, M.R.; Taghizadeh, V. and Shabani, A., 2013. Endo 1- 3(4) Beta-glucanase supplementation of Barley Based Diet and Its Effect on Some Hematological Parameters of Common Carp (Cyprinus carpio). Global Veterinaria. Vol. 10, No. 1, pp: 39-45.
17
Niroomand, M.; Sajadi, M.M.; Yahyavi, M. and Asadi, M., 2011. Effects of dietary Betaine on growth, survival, body composition and resistance of fry rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) under environmental stress, Iranian Scientific Fisheries Journal. Vol. 20, No. 1, pp: 39-47.
18
Oguz, M.N. and Goncuolu, F.K.O.E., 2011. Kavuzu Al nm þ Arpan n B ld rc nlarda Performants ve Baz Kan Parametreleri Uzerine Etkisi.
19
Polat, A. and Beklevik, G., 1998. The importance of betaine and some attractive substances as fish feed additives. Paper presented at the Feed Manufacturing in the Mediterranean Region Recent Advances in Research and Technology, Spain. pp: 217-220.
20
Rosental, A., 2000. Status and Prospects of Sturgeon Farming in Europe. Institute fur Meereskunde Kiel Dusternbrooker Weg 20-2300 keil. Federal Republic of Germany. pp: 144-157.
21
Sattari, M., 2002. Ichthyology (1): Anatomy and Physiology. Naghshe Mehr Press, Tehran, Iran. 862 P. (In Persian).
22
Tukmechi, A.; Morshedi, A. and Delirezh, N., 2007. Changes in intestinal microflora and humoral immune response following probiotic administration in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Animal Veterinary Advance. Vol. 6, pp: 1183-1189.
23
Wu, G. and Davis, D.A., 2005. Interrelationship Among Methionine, Choline, and Betaine in Channel Catfish Ictalurus punctutus. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 36, No. 3, pp: 337-345.
24
Yilmaz, M. and Ablak, O., 2003. The feeding behavior of pikeperch (Sander lucioperca (L., 1758)) living in Hirfanli Dam Lake. Turkish Journal of Veterinary and Animal Sciences. Vol. 27, pp: 1159-1165.
25
Zamini, A.A.; Gholipour Kanani, H.; Esmaeili, A.A.; Ramezani S. and Zoriezahra, S.J., 2014. Effects of two dietary exogenous multi-enzyme supplementation, Natuzyme and beta-mannanase (Hemicell), on growth and blood parameters of Caspian salmon (Salmo trutta caspius). Comparative Clinical Pathology. Vol. 23, pp: 187-192.
26
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات پپتید ضدمیکروبی هپسیدین ماهی آزاد دریای خزر در کنترل باکتری بیماریزای Streptococcus iniae در شرایط درون تنی و بررسی اثر آن بر بیان ژن های سایتوکین در ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspius)
هپسیدین ها گروهی از پپتیدهای ضدمیکروبی غنی از سیستئن هستند که در ماهیان علیه باکتری های گرم مثبت و گرم منفی و هم چنین ویروسها فعال هستند. هدف از انجام تحقیق حاضر، استفاده از پپتید سنتتیک هپسیدین ماهی آزاد دریای خزر (CtHep) برای کنترل باکتری Streptococcus iniae در شرایط درون تنی و هم چنین مطالعه اثرات تنظیم ایمنی این پپتید در ماهی آزاد دریای خزر می باشد. بچه ماهیان آزاد دریای خزر با میانگین وزنی 20 گرم به مقدار 1 میکروگرم به ازای هر گرم ماهی با پپتید سنتتیک CtHep تزریق شدند و سپس در معرض باکتری S. iniae قرار داده گرفتند. بعد از 24 ساعت، مقدار بیان ژن های سایتوکین و میزان بار باکتریایی کل در بافت های کلیه و طحال در تیمارهای آزمایشی و گروه شاهد مورد بررسی قرار گرفت. میزان زنده مانی ماهیان نیز تا روز دهم بررسی شد. بیان ژنهای IL-1β ،IL-6 و TNF-α در تیمارهای دریافت کننده CtHep به طور معنی داری نسبت به گروه شاهد افزایش یافت. به علاوه، میزان بار باکتریایی کل در بافت های کلیه و طحال در ماهیان آلوده شده به باکتری S. iniaeکه CtHep دریافت کرده بودند به طور معنی داری کم تر از ماهیان آلوده شده ای بود که CtHep دریافـت نکرده بـودند. درصد زنده مانی در ماهیان آلوده شده به باکتری S. iniae که پپتید CtHepدریافت کرده بودند، به طور قابل توجهی بیش تر از ماهیان آلوده ای بود که پپتید دریافت نکرده بودند. مطالعه اخیر نشان می دهد که پپتید ضدمیکروبی هپسیدین ماهی آزاد دریای خزر پتانسیل استفاده به عنوان عامل ضدمیکروبی و هم چنین به عنوان محرک ایمنی در آبزی پروری را دارد.
http://www.aejournal.ir/article_106262_893a83ca56d010c60bfbe51ccf363d33.pdf
2020-06-21
129
136
10.22034/aej.2020.106262
پپتید ضدمیکروبی
هپسیدین
ماهی آزاد دریای خزر
بیان ژن
سایتوکین
ایمان
شیردل
iman.shirdel@modares.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
AUTHOR
محمدرضا
کلباسی
mkalbassi@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
LEAD_AUTHOR
سامان
حسینخانی
saman_h@modares.ac.ir
3
گروه بیوشیمی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
AUTHOR
حامد
پاک نژاد
hkolangi@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
Álvarez, C.A.; Guzmán, F.; Cárdenas, C.; Marshall, S.H. and Mercado, L., 2014. Antimicrobial activity of trout hepcidin. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 41, No. 1, pp: 93-101.
1
Aoki, W.; Kuroda, K. and Ueda, M., 2012. Next generation of antimicrobial peptides as molecular targeted medicines. Journal of Bioscience and Bioengineering. Vol. 114, pp: 365-370.
2
Brogden, K.A.; Ackermann, M.; McCray, P.B. and Tack, B.F., 2003. Antimicrobial peptides in animals and their role in host defences. International Journal of Antimicrobial Agents. Vol. 22, pp: 465-478.
3
Brown, K.L. and Hancock, R.E., 2006. Cationic host defense (antimicrobial) peptides. Current Opinion in Immunology. Vol. 18, No. 1, pp: 24-30.
4
Burrowes, O.J.; Hadjicharalambous, C.; Diamond, G. and LEE, T.C., 2004. Evaluation of antimicrobial spectrum and cytotoxic activity of pleurocidin for food applications. Journal of Food Science. Vol. 69, No. 3, pp: 66-71.
5
Casadei, E., 2011. The effect of dietary immunostimulation on antimicrobial peptide expression in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and their potential role in defense against pathogens. Doctoral thesis. University of Aberdeen. 266 p.
6
Chang, W.T.; Pan, C.Y.; Rajanbabu, V.; Cheng, C.W. and Chen, J.Y., 2011. Tilapia (Oreochromis mossambicus) antimicrobial peptide, hepcidin 1–5, shows antitumor activity in cancer cells. Peptides. Vol. 32, pp: 342-352.
7
Chen, J.Y.; Lin, W.J. and Lin, T.L., 2009. A fish antimicrobial peptide, tilapia hepcidin TH2-3, shows potent antitumor activity against human fibrosarcoma cells. Peptides. Vol. 30, No. 9, pp: 1636-1642.
8
Chen, J.; Nie, L. and Chen, J., 2018. Mudskipper (Boleophthalmus pectinirostris) hepcidin-1 and hepcidin-2 present different gene expression profile and antibacterial activity and possess distinct protective effect against Edwardsiella tarda infection. Probiotics and Antimicrobial Proteins. Vol. 10, No. 2, pp: 176-185.
9
Chi, J.R.; Liao, L.S.; Wang, R.G.; Jhu, C.S.; Wu, J.L. and Hu, S.Y., 2015. Molecular cloning and functional characterization of the hepcidin gene from the convict cichlid (Amatitlania nigrofasciata) and its expression pattern in response to lipopolysaccharide challenge. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 41, No. 2, pp: 449-461.
10
Douglas, S.E., 2012. Antimicrobial Peptides and Their Potential as Therapeutants in Aquaculture. In: Aquaculture Biotechnology. Edited by GL Fletcher and ML Rise. John Wiley and Sons. pp: 105-120.
11
Hancock, R.E. and Lehrer, R., 1998. Cationic peptides: a new source of antibiotics. Trends in Biotechnology. Vol. 16, pp: 82-88.
12
Hsieh, J.C.; Pan, C.Y. and Chen, J.Y., 2010. Tilapia hepcidin (TH) 2-3 as a transgene in transgenic fish enhances resistance to Vibrio vulnificus infection and causes variations in immune-related genes after infection by different bacterial species. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 29, No. 3, pp: 430-439.
13
Ingham, A.B. and Moore, R.J., 2007. Recombinant production of antimicrobial peptides in heterologous microbial systems. Biotechnology and Applied Biochemistry. Vol. 47, No. 1, pp: 1-9.
14
Katzenback, B.A., 2015. Antimicrobial Peptides as Mediators of Innate Immunity in Teleosts. Biology. Vol. 4, No. 4, pp: 607-639.
15
Khemtemourian, L.; Desbenoit, N.; Mahesh, P.; Chatterjee, S.; Deschemin, J.C.; Vaulont, S.; Tomas, A.; Sari, M.A. and Artaud, I., 2012. Synthesis and biological activity of mouse hepcidin peptide analogs containing three disulfide bridges: manual and microwave-assisted solid phase peptide synthesis. Protein and Peptide Letters. Vol. 19, pp: 219-227.
16
Kooshkaki, M.R.; Bandehpour, M. and Kazemi, B., 2014. The design of the constructs of cpsD and simA genes of Streptococcus iniae. Novelty in Biomedicine. Vol. 2, No. 1, pp: 1-5.
17
Liu, Y.; Han, X.; Chen, X.; Yu, S.; Chai, Y.; Zhai, T. and Zhu, Q., 2017. Molecular characterization and functional analysis of the hepcidin gene from roughskin sculpin (Trachidermus fasciatus). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 68, pp: 349-358.
18
Masso-Silva, J.A. and Diamond G., 2014. Antimicrobial peptides from fish. Pharmaceuticals. Vol. 7, No. 3, pp: 265-310.
19
Pan, C.Y.; Huang, T.C.; Wang, Y.D.; Yeh, Y.C.; Hui, C.F. and Chen, J.Y., 2012. Oral administration of recombinant epinecidin-1 protected grouper (Epinephelus coioides) and zebrafish (Danio rerio) from Vibrio vulnificus infection and enhanced immune-related gene expressions. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 32, No. 6, pp: 947-957.
20
Pan, C.Y.; Peng, K.C.; Lin, C.H. and Chen, J.Y., 2011. Transgenic expression of tilapia hepcidin 1-5 and shrimp chelonianin in zebrafish and their resistance to bacterial pathogens. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 31, No. 2, pp: 275-285.
21
Pérez-Ramos, A.; Nácher-Vázquez, M.; Notararigo, S.; López, P. and Mohedano, M.L., 2015. Current and Future Applications of Bacterial Extracellular Polysaccharides. In: Probiotics, Prebiotics, and Synbiotics. Edited by VR Preedy and RR Watson. Elsevier Oxford, UK. pp: 329-344.
22
Ruenkoed, S. and Wang, W., 2019. Cloning, characterization, antibacterial activity and expression of hamp in pond loach (Misgurnus anguillicaudatus) after bacterial challenge with Aeromonas hydrophila. Aquaculture. Vol. 499, pp: 61-71.
23
Shike, H.; Lauth, X.; Westerman, M.E.; Ostland, V.E.; Carlberg, J.M.; Van Olst, J.C.; Shimizu, C.; Bulet, P. and Burns, J.C., 2002. Bass hepcidin is a novel antimicrobial peptide induced by bacterial challenge. European Journal of Biochemistry. Vol. 269, No. 8, pp: 2232-2237.
24
Shirdel, I.; Kalbassi, M.R.; Hosseinkhani, S.; Paknejad, H. and Wink, M., 2019. Cloning, characterization and tissue-specific expression of the antimicrobial peptide hepcidin from Caspian trout (Salmo caspius) and the antibacterial activity of the synthetic peptide. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 90, pp: 288-296.
25
Soltani, M.; Jamshidi, S. and Sharifpour, I., 2005. Streptococcosis caused by Streptococcus iniae in farmed rainbow trout (Oncorhynchys mykiss) in Iran: biophysical characteristics and pathogenesis. Bulletin of the European Association of Fish Pathologists. Vol. 25, No. 3, pp: 95-106.
26
Zhang, J.; Yu, L.P.; Li, M.F. and Sun, L., 2014. Turbot (Scophthalmus maximus) hepcidin-1 and hepcidin-2 possess antimicrobial activity and promote resistance against bacterial and viral infection. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 38, No. 1, pp: 127-134.
27
Zhang, J.M. and An, J., 2007. Cytokines, inflammation and pain. International Anesthesiology Clinics. Vol. 45, No. 2, pp: 27-37.
28
ORIGINAL_ARTICLE
تجویز خوراکی لاکتوباسیلوس رامنوسوس (Lactobacillus rhamnosus) جهت کاهش اثرات مخرب مالاتیون بر سلامت عمومی و مقاومت در برابر بیماری در قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
تحقیق حاضر با هدف نشان دادن تأثیر تجویز خوراکی پروبیوتیک Lactobacillus rhamnosus بر عملکرد ایمنی قزل آلای رنگین کمان در مواجه با سمیت تحت کشنده مالاتیون انجام شد. بدین منظور، 180 قطعه ماهی قزل آلای رنگین کمان با میانگین وزن 2/6±43 گرم به چهار گروه آزمایشی شاهد، تجویز خوراکی پروبیوتیک، در معرض مالاتیون توأم با تجویز خوراکی پروبیوتیک و در معرض مالاتیون توأم با جیرة عاری از پروبیوتیک تقسیم شدند و به مدت 28 روز تحت تأثیر تیمارهای مذکور قرار گرفتند. نتایج به دست آمده بیانگر کاهش معنی دار تعداد گلبول های قرمز، گلبول های سفید و درصد لنفوسیت های خون در ماهیان تحت تیمار با مالاتیون نسبت به گروه شاهد بود. تجویز خوراکی L. rhamnosus در مقایسه با جیرة شاهد به طور معنی داری تعداد گلبول های قرمز و سفید خون در ماهیان تحت تیمار با مالاتیون را افزایش داد (0/05>P). برآورد درصد تلفات تجمعی ماهیان در روز 14 پس از چالش با باکتری بیماریزای Aeromonas hydrophila نشان دهندة کاهش معنی دار درصد بازماندگی در ماهیان تحت تیمار با مالاتیون بود و تجویز خوراکی L. rhamnosus در این گروه میزان مرگ و میر را به طور معنی داری کاهش داد. به طورکلی با توجه به نتایج حاصل از سنجش پارامترهای خون شناسی و هم چنین میزان بازماندگی ماهیان پس از چالش با A. hydrophila، تجویز خوراکی L. rhamnosus باعث بهبود عملکرد سیستم دفاعی ماهی قزل آلای رنگین کمان می شود و می تواند اثرات مخرب مالاتیون را بر عملکرد ایمنی قزل آلای رنگین کمان کاهش دهد.
http://www.aejournal.ir/article_106472_0c2425f8e2ada84755c7568beb10f879.pdf
2020-06-21
137
144
10.22034/aej.2020.106472
آفت کش ارگانوفسفره
Lactobacillus rhamnosus
قزل آلای رنگین کمان
Aeromonas hydrophila
سعید
مرادی
s71moradi@ut.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
علیرضا
میرواقفی
avaghefi@ut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
کامران
رضایی توابع
krtavabe@ut.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
آهنگرزاده، م.؛ قربانپورنجف آبادی، م.؛ پیغان، ر.؛ شریف روحانی، م. و سلطانی، م.، 1394. نقش آئروموناس هیدروفیلا در سپتی سمی های باکتریایی کپور ماهیان پرورشی استان خوزستان. مجله دامپزشکی ایران. دوره 11، شماره 3، صفحات 5 تا 16.
1
راضی جلالی، م. و خواجه، غ.، 1383. روش ها و مفاهیم خون شناسی برای تکنسین های دامپزشکی. انتشارات دانشگاه شهید چمران. اهواز. 190 صفحه.
2
غفاری فارسانی، ح.؛ پورباقر، ه. و فرحمند، ح.، 1395. اثر سم مالاتیون بر شکستگی DNA در بافت کبد و آبشش ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) با استفاده از روش میانگین وزنی. مجله شیلات (منابع طبیعی ایران). دوره 69، شماره 1، صفحات 89 تا 99.
3
غفاری فارسانی، ح.؛ هدایتی، س.ع.؛ زارع ندیمی بین، ن.؛ عزیزپور، س. و شهبازی ناصرآباد، س.، 1395. بررسی تاثیر غلظت های تحت کشنده سم مالاتیون بر پارامترهای خون شناسی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). نشریه اقیانوس شناسی. دوره 7، شماره 27، صفحات 1 تا 9.
4
فرخی، ف.؛ جمیلی، ش.؛ شهیدی، م.؛ ماشینچیان، ع. و وثوقی، غ.، 1394. بررسی تاثیر حشره کش مالاتیون بر بافت و آنزیم های کبدی ماهی کلمه دریای خزر (Rutilus rutilus casspicus). مجله علمی شیلات ایران. دوره 24، شماره 4، صفحات 117 تا 126.
5
مخیر،ب.،1389. بیماری های ماهیان پرورشی. انتشارات دانشگاه تهران.چاپ ششم. 638 صفحه.
6
Ahmadi, K.; Mirvaghefei, A.R.; Banaee, M. and Vosoghei, A.R., 2014. Effects of long-term diazinon exposure on some immunological and haematological parameters in rainbow trout Oncorhynchus mykiss (Walbaum, 1792). Toxicology and Environmental Health Sciences. Vol. 6, pp: 1-7.
7
Amirkhani, N. and Firouzbakhsh, F., 2015. Protective effects of basil (Ocimum basilicum) ethanolic extract supplementation diets against experimental Aeromonas hydrophila infection in common carp (Cyprinus carpio). Aquaculture Research. Vol. 46, pp: 716-724.
8
Banaee, M.; Sureda, A.; Mirvaghefi, A.R. and Ahmadi, K., 2011. Effects of diazinon on biochemical parameters of blood in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Pesticide biochemistry and physiology. Vol. 99, pp: 1-6.
9
Benejam, L.; Benito, J. and García-Berthou, E., 2010. Decreases in condition and fecundity of freshwater fishes in a highly polluted reservoir. Water, Air and Soil Pollution. Vol. 210, pp: 231-242.
10
Castex, M.; Lemaire, P.; Wabete, N. and Chim, L., 2009. Effect of dietary probiotic Pediococcus acidilactici on antioxidant defences and oxidative stress status of shrimp Litopenaeus stylirostris. Aquaculture. Vol. 294, pp: 306-313.
11
Dietrich, J.P.; Van Gaest, A.L.; Strickland, S.A. and Arkoosh, M.R., 2014. The impact of temperature stress and pesticide exposure on mortality and disease susceptibility of endangered Pacific salmon. Chemosphere. Vol. 108, pp: 353-359.
12
Dorafshan, S.; Kalbassi, M.R.; Pourkazemi, M.; Amiri, B.M.; Karimi, S.S., 2008. Effects of triploidy on the Caspian salmon Salmo trutta caspius haematology. Fish Physiology and Biochemistry, Vol. 34, pp: 195-200.
13
El-Rhman, A.M.A.; Khattab, Y.A. and Shalaby, A.M., 2009. Micrococcus luteus and Pseudomonas species as probiotics for promoting the growth performance and health of Nile tilapia, Oreochromis niloticus. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 27, pp: 175-180.
14
Farzanfar, A., 2006. The use of probiotics in shrimp aquaculture. FEMS Immunology & Medical Microbiology. Vol. 48, pp: 149-158.
15
Feldman, B.F.; Zinkl, J.G. and Jain, N.C., 2000. Schalm's Veterinary Hematology 5th ed. Lippincott Williams & Wilkins. pp: 1120-1124.
16
Galal, A.A.; Reda, R.M. and Mohamed, A.A.R., 2018. Influences of Chlorella vulgaris dietary supplementation on growth performance, hematology, immune response and disease resistance in Oreochromis niloticus exposed to sub lethal concentrations of penoxsulam herbicide. Fish & shellfish immunology. Vol. 77, pp: 445-456.
17
Galloway, T. and Handy, R., 2003. Immunotoxicity of organophosphorous pesticides. Ecotoxicology. Vol. 12, pp: 345-363.
18
Gries, T. and Purghart, V., 2001. Malathion technical: acute immobilisation test with daphnids (Daphnia magna) under flow-through conditions. AG. Study. Vol. 1005, 115 p.
19
Houston, AH.; Dobric, N. and Kahurananga, R., 1996. The nature of hematological response in fish. Fish Physiol Biochem. Vol. 15, pp: 339-347.
20
Ibrahim, A.T.A. and Harabawy, A.S., 2014. Sublethal toxicity of carbofuran on the African catfish Clarias gariepinus: Hormonal, enzymatic and antioxidant responses. Ecotoxicology & environmental safety. Vol. 106, pp: 33-39.
21
Jenkins, F.; Smith, J.; Rajanna, B.; Shameem, U.; Umadevi, K.; Sandhya, V. and Madhavi, R., 2003. Effect of sub-lethal concentrations of endosulfan on hematological and serum biochemical parameters in the carp Cyprinus carpio. Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 70, pp: 0993-0997.
22
Kawashima, K. and Fujii, T., 2004. Expression of non neuronal acetylcholine in lymphocytes and its contribution to the regulation of immune function. Front Biosci. Vol. 9, pp: 2063-2085.
23
Kaya, H.; Çelik, E.Ş.; Yılmaz, S.; Tulgar, A.; Akbulut, M. and Demir, N., 2015. Hematological, serum biochemical, and immunological responses in common carp (Cyprinus carpio) exposed to phosalone. Comparative Clinical Pathology. Vol. 24, pp: 497-507.
24
Khalil, S.R.; Reda, R.M. and Awad, A., 2017. Efficacy of Spirulina platensis diet supplements on disease resistance and immune-related gene expression in Cyprinus carpio L. exposed to herbicide atrazine. Fish & shellfish immunology. Vol. 67, pp: 119-128.
25
Köllner, B.; Wasserrab, B.; Kotterba, G. and Fischer, U., 2002. Evaluation of immune functions of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) how can environmental influences be detected? Toxicology letters. Vol. 131, pp: 83-95.
26
LaPatra, S.E.; Plant, K.P.; Alcorn, S.; Ostland, V. and Winton, J., 2010. An experimental vaccine against Aeromonas hydrophila can induce protection in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Journal of fish diseases. Vol. 33, pp: 143-151.
27
Li, Z.H.; Zlabek, V.; Velisek, J.; Grabic, R.; Machova, J.; Kolarova, J. and Randak, T., 2011. Acute toxicity of carbamazepine to juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): effects on antioxidant responses, hematological parameters and hepatic EROD. Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 74, pp: 319-327.
28
Lin, H.L.; Shiu, Y.L.; Chiu, C.S.; Huang, S.L. and Liu, C.H., 2017. Screening probiotic candidates for a mixture of probiotics to enhance the growth performance, immunity, and disease resistance of Asian seabass, against Aeromonas hydrophila. Fish & shellfish immunol. Vol. 60, pp: 474-482.
29
Mohapatra, S.; Chakraborty, T.; Prusty, A.K.; Kumar, K.; Prasad, K.P. and Mohanta, K.N., 2012. Fenvalerate induced stress mitigation by dietary supplementation of multispecies probiotic mixture in a tropical freshwater fish, Labeo rohita. Pesticide biochemistry and physiology. Vol. 104. pp: 28-37.
30
Munir, M.B.; Hashim, R.; Nor, S.A.M. and Marsh, T.L., 2018. Effect of dietary prebiotics and probiotics on snakehead (Channa striata) health: Haematology and disease resistance parameters against Aeromonas hydrophila. Fish & shellfish immunology. Vol. 75, pp: 99-108.
31
Narra, M.R.; Rajender, K.; Reddy, R.R.; Rao, J.V. and Begum, G., 2015. The role of vitamin C as antioxidant in protection of biochemical and haematological stress induced by chlorpyrifos in freshwater fish Clarias batrachus. Chemosphere. Vol. 132, pp: 172-178.
32
OECD. 1984. Guideline for Testing of Chemical Section 2, Effects on biotic systems; pp: 1-39.
33
Ovie, K.S. and Ikomi, U., 2011. Alterations in some haematological parameters of the African Snakehead: Parachanna africans exposed to cadmium. Notulae Scientia Biologicae. Vol. 3, pp:29-34.
34
Pirarat, N.; Kobayashi, T.; Katagiri, T.; Maita, M. and Endo, M., 2006. Protective effects and mechanisms of a probiotic bacterium Lactobacillus rhamnosus against experimental Edwardsiella tarda infection in tilapia (Oreochromis niloticus). Veterinary immunology and immunopathology. Vol. 113, pp: 339-347.
35
Rehulka, J., 2000. Influence of astaxanthin on growth rate, condition, and some blood indices of rainbow trout, Oncorhynchusmykiss. Aquaculture, Vol. 190, pp: 27-47.
36
Saravanan, M.; Kumar, K.P. and Ramesh, M., 2011. Haematological and biochemical responses of freshwater teleost fish Cyprinus carpio (Actinopterygii: Cypriniformes) during acute and chronic sublethal exposure to lindane. Pesticide Biochemistry & Physiology. Vol. 100, pp: 206-211.
37
Sinyakov, M.S.; Dror, M.; Zhevelev, H.M.; Margel, S. and Avtalion, R.R., 2002. Natural antibodies and their significance in active immunization and protection against a defined pathogen in fish. Vaccine. Vol. 20, pp: 3668-3674.
38
Tellez-Bañuelos, M.C.; Santerre, A.; Casas-Solis, J. and Zaitseva, G., 2010. Endosulfan increases seric interleukin-2 like (IL-2L) factor and immunoglobulin M (IgM) of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) challenged with Aeromonas hydrophila. Fish & shellfish immunol. Vol. 28, pp: 401-405.
39
Trinder, M.; Bisanz, J.E.; Burton, J.P. and Reid, G., 2015. Probiotic lactobacilli: a potential prophylactic treatment for reducing pesticide absorption in humans and wildlife. Beneficial microbes. Vol. 6, pp: 841-847.
40
Verschuere, L.; Rombaut, G.; Sorgeloos, P. and Verstraete, W., 2000. Probiotic bacteria as biological control agents in aquaculture. Microbiology and molecular biology reviews. Vol. 64, pp: 655-671.
41
Yarahmadi, P.; Farsani, H.G.; Khazaei, A.; Khodadadi, M.; Rashidiyan, G. and Jalali, M.A., 2016. Protective effects of the prebiotic on the immunological indicators of rainbow trout infected with Aeromonas hydrophila. Fish & shellfish immunology. Vol. 54, pp: 589-597.
42
Yonar, S.M.; Ural, M.Ş.; Silici, S. and Yonar, M.E., 2014. Malathion-induced changes in the haematological profile, the immune response, and the oxidative/antioxidant status of Cyprinus carpiocarpio: Protective role of propolis. Ecotoxicology & environmental safety. Vol. 102, pp: 202-209.
43
Zhang, C.N.; Zhang, J.L.; Guan, W.C.; Zhang, X.F.; Guan, S.H.; Zeng, Q.H. and Cui, W., 2017. Effects of Lactobacillus delbrueckii on immune response, disease resistance against Aeromonas hydrophila, antioxidant capability and growth performance of Cyprinus carpio Huanghe var. Fish & shellfish immunolo. Vol. 68, pp: 84-91.
44
ORIGINAL_ARTICLE
تشخیص، بررسی فیلوژنی و کلونینگ ژن G گلیکوپروتئین ویروس سپتی سمی هموراژیک (VHSV) جدا شده از ماهی قزل آلای رنگین کمان (Onchorhynchus mykiss)
بیماری سپتی سمی خونریزی دهنده از مهمترین بیماری های ویروس آزادماهیان می باشد. ژنوم این ویروس شامل شش ژن می باشد که مهم ترین آن ژن G (گلیکوپروتئین) است و در ایمنی زایی علیه این ویروس نقش دارد. هدف از این مطالعه شناسایی ویروس سپتی سمی خونریزی دهنده قزل آلای رنگین کمان، مطالعه فیلوژنی و کلونینگ ژن G ویروس در وکتور pTZ57r/t بود. پس از تشخیص ویروس سپتی سمی خونریزی دهنده به روش RT-PCR و کلونیگ ژن G داخل پلاسمید pTZ57r/t، پلاسمید نوترکیب سنتزشده به باکتری پذیرا (E.coli) منتقل گردید. از کلونی های سفید دربردارنده وکتور نوترکیب جهت استخراج پلاسمید استفاده شد. اندازه ژن G ویروس سپتی سمی هموراژیک bp 1523 می باشد که در این پژوهش جهت تایید کلونینگ از روش کلونی PCRو تعیین توالی اسفاده شد. بررسی های حاصل از این مطالعه نشان داد که ژن G با موفقیت در وکتور pTZ57r/t کلون گردیده است و می توان ازآن جهت بیان گلیکوپروتئین ویروس در وکتورهای بیانی به منظور تولید پروتئین استفاده کرد. نتایج حاصل شده از تعیین توالی ژن G نیز نشان داد که ویروس شناسایی شده در این مطالعه متعلق به ژنوتیپ Ia-2 بوده است. مطالعه حاضر نخستین تحقیقی است که در کشور به منظور کلونینگ ژن Gویروس سپتی سمی خونریزی دهنده در وکتورهای پلاسمیدی انجام شده است.
http://www.aejournal.ir/article_106476_9167a339a971ebc57ea806e313d79ae3.pdf
2020-06-21
145
150
10.22034/aej.2020.106476
ویروس VHS
G گلیکوپروتئین
قزل آلای رنگین کمان
کلونینگ
امیرعلی
حیدری
dramiraliheidari@gmail.com
1
گروه بهداشت و بیماری های آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
مصطفی
اخلاقی
akhlaghi@shirazu.ac.ir
2
گروه بهداشت و بیماری های آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
علی
محمدی
mohammad@shirazu.ac.ir
3
گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
LEAD_AUTHOR
لاله
معظمی گودرزی
goudarzi2000@yahoo.com
4
گروه تشخیص بیماری های آبزیان، مرکز ملی تشخیص، آزمایشگاههای مرجع و مطالعات کاربردی، سازمان دامپزشکی کشور، تهران، ایران
AUTHOR
آزاده
یکتاسرشت
azadeh_neisi@shirau.ac.ir
5
گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
Acosta, F.; Collet, B.; Lorenzen, N. and Ellis, A.E., 2006. Expression of the glycoprotein of viral haemorrhagic septicaemia virus (VHSV) on the surface of the fish cell line RTG-P1 induces type 1 interferon expression in neighbouring cells. Fish & shellfish immunol. Vol. 21, No. 3, pp: 272-278.
1
Ahmadivand, S.; Soltani, M.; Mardani, K.; Shokrpoor, S.; Rahmati Holasoo, H.; Mokhtari, A. and Hasanzadeh, R., 2016. Isolation and identification of viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) from farmed rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in Iran. Acta tropica. Vol. 15, No. 6, pp: 30-36.
2
Assenberg, R.; Delmas, O.; Morin, B.; Graham, S.C.; De Lamballerie, X.; Laubert, C. and Brandt, B.W., 2010. Genomics and structure/function studies of Rhabdoviridae proteins involved in replication and transcription. Antiviral Research. Vol. 87, No. 2, pp: 149-161.
3
Bearzotti, M.; Monnier, A. F.; Vende, P.; Grosclaude, J.; De Kinkelin, P. and Benmansour, A., 1995. The glycoprotein of viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV): antigenicity and role in virulence. Veterinary research. Vol. 26, No. 5, pp: 413-422.
4
Bellet, R., 1965. Viral hemorrhagic septicemia (VHS) of the rainbow trout bred in France. Annals of the New York Academy of Sciences. Vol. 126, No. 1, pp: 461-467.
5
Besse, P., 1955. Research on the etiology of infectious anemia of trout. Bulliten de l’Academie Veterinaire de France. Vol. 5, pp: 194-198.
6
Brudeseth, B.E.; Raynard, R.S.; King, J.A. and Evensen, Ø., 2005. Sequential pathology after experimental infection with marine viral hemorrhagic septicemia virus isolates of low and high virulence in turbot (Scophthalmus maximus L.). Veterinary Pathology Online. Vol. 42, No. 1, pp: 9-18.
7
Casadaban, M.J. and Cohen, S.N., 1980. Analysis of gene control signals by DNA fusion and cloning in Escherichia coli. J of molecular biology. Vol. 138, No. 2, pp: 179-207.
8
Chico, V.; Ortega Villaizan, M.; Falco, A.; Tafalla, C.; Perez, L.; Coll, J.M. and Estepa, A., 2009. The immunogenicity of viral haemorragic septicaemia rhabdovirus (VHSV) DNA vaccines can depend on plasmid regulatory sequences. Vaccine. Vol. 27, No. 13, pp: 1938-1948.
9
Einer Jensen, K.; Ahrens, P. and Lorenzen, N., 2005. Parallel phylogenetic analyses using the N, G or Nv gene from a fixed group of VHSV isolates reveal the same overall genetic typing. Diseases of Aquatic Organisms. Vol. 67, No. 2, pp: 39-45.
10
Garver, K.A.; Hawley, L.M.; McClure, C.A.; Schroeder, T.; Aldous, S.; Doig, F. and Richard, J., 2011. Development and validation of a reverse transcription quantitative PCR for universal detection of viral hemorrhagic septicemia virus. Diseases of Aquatic Organisms. Vol. 95, No. 2, pp: 97-112
11
Ghittino, P., 1965. Viral hemorrhagic septicemia (VHS) in rainbow trout in Italy. Annals of the New York Academy of Sciences. Vol. 126, No. 1, pp: 468-478.
12
Ghorani, M.; Adel, M.; Dadar, M.; Ghalyanchi Langeroudi, A.; Kamyabi, R.; Vikram N.V. and Einer Jensen, K., 2016. Phylogenetic analysis of the glycoprotein gene of viral hemorrhagic septicemia virus from Iranian trout farms points towards a common European origin. Veterinary Microbiology. Vol. 186, pp: 97-101.
13
Haghighi, K.H.A.; Bandehpour, M.; Sharifnia, Z. and Kazemi, B., 2008. Diagnosis of viral haemorrhagic septicaemia (VHS) in Iranian rainbow trout aquaculture by pathology & molecular techniques. European Association of Fish Pathologists. Vol. 28, pp: 170-175.
14
Hawley, L.M. and Garver, K.A., 2008. Stability of viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) in freshwater and seawater at various temperatures. Diseases of Aquatic Organisms. Vol. 82, No. 3, pp: 171-178.
15
Kahns, S.; Skall, H.F.; Kaas, R.S.; Korsholm, H.; Bang, J.B.; Jonstrup, S.P. and Olesen, N.J., 2012. European freshwater VHSV genotype Ia isolates divide into two distinct subpopulations. Diseases of Aquatic Organisms. Vol. 99, pp: 23–35.
16
Kim, W.S.; Kim, S.R.; Kim, D.; Kim, J.O.; Park, M.A.; Kitamura, S.I. and Oh, M.J., 2009. An outbreak of VHSV (viral hemorrhagic septicemia virus) infection in farmed olive flounder Paralichthys olivaceus in Korea. Aquaculture. Vol. 296, No. 1, pp: 165-168.
17
Lazarte, J.M.S.; Kim, Y.R.; Lee, J.S.; Im, S.P.; Kim, S.W.; Jung, J.W. and Jung, T.S., 2017. Enhancement of glycoprotein-based DNA vaccine for viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) via addition of the molecular adjuvant, DDX41. Fish & shellfish immunology. Vol. 62, pp: 356-365.
18
Lecocq Xhonneux, F.; Thiry, M.; Dheur, I.; Rossius, M.; Vanderheijden, N.; Martial, J. and De Kinkelin, P., 1994. A recombinant viral haemorrhagic septicaemia virus glycoprotein expressed in insect cells induces protective immunity in rainbow trout. Journal of General Virology. Vol. 75, No. 7, pp: 1579-1587.
19
Li, X.; Sui, X.; Zhang, Y.; Sun, Y.; Zhao, Y.; Zhai, Y. and Wang, Q., 2010. An improved calcium chloride method preparation and transformation of competent cells. African Journal of Biotechnology. Vol. 9, No. 50, pp: 8549-8554.
20
Lorenzen, N.; Olesen, N.J.; Jørgensen, P.V.; Etzerodt, M.; Holtet, T.L. and Thøgersen, H.C., 1993. Molecular cloning and expression in Escherichia coli of the glycoprotein gene of VHS virus, and immunization of rainbow trout with the recombinant protein. Journal of General Virology. Vol. 74, No. 4, pp: 623-630.
21
Martinez Lopez, A.; Garcia Valtanen, P.; Ortega Villaizan, M.; Chico, V.; Gomez Casado, E.; Coll, J.M. and Estepa, A., 2014. VHSV G glycoprotein major determinants implicated in triggering the host type I IFN antiviral response as DNA vaccine molecular adjuvants. Vaccine. Vol. 32, No. 45, pp: 6012-6019.
22
Nishizawa, T.; Savaş, H.; Işıdan, H.; Üstündag, C.; Iwamoto, H. and Yoshimizu, M., 2006. Genotyping and pathogenicity of viral hemorrhagic septicemia virus from free-living turbot (Psetta maxima) in a Turkish coastal area of the Black Sea. Applied and Environmental Microbiology. Vol. 72, No. 4, pp: 2373-2378.
23
Purcell, M.K.; Laing, K.J. and Winton, J.R., 2012. Immunity to fish rhabdoviruses. Viruses. Vol. 4, No. 1, pp: 140-166.
24
Sambrook, J. and Russell, D.W., 2001. Molecular Cloning: A Laboratory Manual, 3rd eds. Cold Spring Harbor Laborator Press. ISBN.978-087969577-4, New York. 2344 p.
25
Schaeperclause, W., 1938. Damage to the German fisheries by fish parasites and fishdiseases. Allgemeine Fischerei Zeitung. Vol. 41, pp: :256-259.
26
Schlotfeldt, H.J.; Ahne, W.; Vestergard Jorgensen, P.E. and Glende, W., 1991. Occurrence of viral haemorrhagic septicaemia in turbot (Scophthalmus maximus) a natural outbreak. Bulletin of the European Association of Fish Pathologists (United Kingdom).
27
Skall, H.F.; Olesen, N.J. and Mellergaard, S., 2005. Prevalence of viral haemorrhagic septicaemia virus in Danish marine fishes and its occurrence in new host species. Diseases of Aquatic Organisms. Vol. 66, No. 2, pp: 145-151.
28
Thompson, T.M.; Batts, W.N.; Faisal, M.; Bowser, P.; Casey, J.W.; Phillips, K. and Kurath, G., 2011. Emergence of Viral hemorrhagic septicemia virus in the North American Great Lakes region is associated with low viral genetic diversity. Diseases of Aquatic Organisms. Vol. 96, No. 1, pp: 29-43.
29
Vinay, T.N.; Kim, Y.J.; Jung, M.H.; Kim, W.S.; Kim, D.H. and Jung, S.J., 2013. Inactivated vaccine against viral hemorrhagic septicemia (VHS) emulsified with squalene and aluminum hydroxide adjuvant provides long term protection in olive flounder (Paralichthys olivaceus). Vaccine. Vol. 31, No. 41, pp: 4603-4610.
30
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر باکتری Lactobacillus rhamnosus بر شاخص های بیوشیمیایی خون و فعالیت آنزیم های هضمی در ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) تغذیه شده با جیره آلوده به آفلاتوکسین B1
در فرایند تولید و نگه داری خوراک آبزیان، همواره ممکن است برخی آلودگی ها به غذا سرایت کند که آفلاتوکسین B1 یکی از شایع ترین و خطرناک ترین این سموم است. هدف از انجام این تحقیق بررسی تاثیر پروبیوتیک Lactobacillus rhamnosus بر بهبود شرایط زیستی ماهیان قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) تغذیه شده با جیره آلوده به آفلاتوکسین B1 بود. در این آزمایش، 120 قطعه ماهی 4±42 گرمی در 12 مخزن فایبرگلاس با 4 جیره غذایی مختلف (جیره پایه، جیره حاوی پروبیوتیک، جیره حاوی سم آفلاتوکسین و جیره ترکیب سم و پروبیوتیک) تغذیه شدند و پس از اتمام دوره 30 روزه آزمایش، میزان گلوکز خون در گروه تغذیه شده با جیره حاوی سم آفلاتوکسین B1، به شکل معنی داری از سایر تیمارها بیش تر بود (0/05>P). کورتیزول و آنزیم آلکالین فسفاتاز در هردو تیمار جیره پایه و جیره حاوی پروبیوتیک، کم ترین مقدار را نشان دادند. فعالیت آنزیم تریپسین در روده تیمارهای پروبیوتیکی، به شکل معنی دار نسبت به سایر تیمارها بیش تر بود. درحالی که جیره حاوی سم فعالیت آنزیم کیموتریپسین را در روده ماهی کاهش داد و افزودن پروبیوتیک به جیره غذایی باعث افزایش معنی دار فعالیت این آنزیم شد. میزان تلفات نیز در تیمار جیره حاوی سم به شکل معنی داری از سایر تیمارها بیش تر بود اما با افزودن پروبیوتیک به جیره، در تیمار جیره حاوی پروبیوتیک و سم به شکل معنی دار کاهش یافت. در پایان نتایج به دست آمده از این مطالعه نشان می دهد که پروبیوتیک Lactobacillus rhamnosus می تواند به عنوان یک افزودنی خوراکی برای کاهش اثرات سمی آفلاتوکسین B1 و بهبود میزان بقا در ماهی استفاده شود و پرورش دهندگان قزل آلا می توانند به منظور کاهش اثر سمیت آفلاتوکسین از این پروبیوتیک در جیره خود استفاده نمایند.
http://www.aejournal.ir/article_106537_b8a85e6462bdfa0a2ea83506458c4d77.pdf
2020-06-21
151
160
10.22034/aej.2020.106537
پروبیوتیک
پروتئین کل
تریپسین
سرم خون
سم
گلوکز
نازنین
صادقی
nazanin.sadeghi7@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
رعنا
بهادری
rana.bahadori@ut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
سید مهدی
اجاق
ojagh@gau.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
AUTHOR
عرفان
سلمرودی
erfansalamroodi@ut.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
جوانمردی، س.؛ رضایی توابع، ک.؛ مرادی، س. و بیات غیاثی، ل.، 1396. اثرات سطوح مختلف ویتامین C در جیره غذایی بر عملکرد رشد، فعالیت آنزیم های هضمی و برخی فاکتورهای استرسی خون ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) تحت سمیت تحت کشندة سم مالاتیون. فصلنامه علوم آبزی پروری. دوره 5، شماره 2، صفحات 40 تا 49.
1
دهقان نواز، م.؛ ستاری، م. و رمضان پور، ز.، ۱۳۹۴. تغییرات آسپارتات آمینوترانسفراز و لاکتات دهیدروژناز تحت تاثیر سمیت جلبک Nodularia spumigena در ماهی آزاد دریای خزر Salmo trutta caspius. مجله توسعه آبزی پروری. دوره 9، شماره 4، صفحات 21 تا 30.
2
Ahmad, Z., 2011. Toxicity bioassay and haematological changes induced by diazinon in common carp, Cyprinus carpio. African Journal of Biotechnology. Vol. 10, pp: 13852-13859.
3
Al-Ghanim, K.A., 2012. Acute toxicity and effects of sub lethal malathion exposure on biochemical and haematological parameters of Oreochromis niloticus Scientific Research & Essays. Vol. 7, No. 16, pp: 1674-1680.
4
Bernfeld, P., 2014. Enzymes of starch degradation and synthesis. Advances in enzymology and related areas of molecular biology. Vol. 12, No. 3, pp: 379-428.
5
Cagauan, A.G.; Tayaban, R.H.; Somga, J.R. and Bartolome, R.M., 2004. Effect of aflatoxin contaminated feeds in Nile tilapia (Oreochromis niloticus L.). In Abstract of the 6th international symposium on tilapia in aquaculture (ISTA 6) section: health management and diseases Manila, Philippines. Vol. 12, 16 p.
6
Chen, H.Y. and Rawlings, R., 2008. The truth of mycotoxin contamination of feed in Asia region. China Poult. Vol. 30, No. 16, pp: 33-35.
7
Diamantino, T.C., 2001. Lactate dehydrogenase activity as an effect criterion in toxicity tests with Daphnia magna straus. Chemosphere. Vol. 45, No. 4-5, pp: 553-560.
8
Dirican, S., 2015. A review of effects of aflatoxins in aquaculture. Appl Res J. Vol. 1, pp: 192-196.
9
El-Gawad E.A.A. and Hamid, O.M.A., 2014. Effect of vitamin C dietary supplementation in reducing the alterations induced by fenitrothion in Oreochromis niloticus. Fish physiology and biochemistry. Vol. 40, No. 3, pp: 787-796.
10
El-Nezami, H.; Kankaanpaa, P.; Salminen, S. and Ahokas, J., 1998. Ability of dairy strains of lactic acid bacteria to bind a common food carcinogen, aflatoxin B1. Food and chemical toxicology. Vol. 36, No. 4, pp: 321-326.
11
Fan, Y.; Liu, L.; Zhao, L.; Wang, X.; Wang, D.; Huang, C.; Zhang, J.; Ji, C. and Ma, Q., 2018. Influence of Bacillus subtilis ANSB060 on growth, digestive enzyme and aflatoxin residue in Yellow River carp fed diets contaminated with aflatoxin B1. Food and chemical toxicology. Vol. 113, pp: 108-114.
12
Farrell, A.P.; Stevens, E.D.; Cech, J.J. and Richards, J.G., 2011. Encyclopedia of fish physiology: From genome to environment. Academic Press, Elsevier, London. 2163 p.
13
Greco, M.; Pardo, A. and Pose, G., 2015. Mycotoxigenic fungi and natural co-occurrence of mycotoxins in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) feeds. Toxins. Vol. 7, No. 11, pp: 4595-4609.
14
Hamed, H.S., 2015. Impact of a short-term malathion exposure of Nile tilapia, (Oreochromis niloticus): the protective role of selenium. International Journal of Environmental Monitoring and Analysis. Vol. 3, pp: 30-37.
15
Hormisch, D.; Brost, I.; Kohring, G.W.; Giffhorn, F.; Kroppenstedt, R.M.; Stackebradt, E.; Färber, P. and Holzapfel, W.H., 2004. Mycobacterium fluoranthenivorans sp. nov., a fluoranthene and aflatoxin B1 degrading bacterium from contaminated soil of a former coal gas plant. Systematic and applied microbiology. Vol. 27, No. 6, pp: 653-660.
16
Huang, Y.; Han, D.; Zhu, X.; Yang, Y.; Jin, J.; Chen, Y. and Xie, S., 2011. Response and recovery of gibel carp from subchronic oral administration of aflatoxin B1. Aquaculture. Vol. 319, No. 1-2, pp: 89-97.
17
Hummel, B.C., 1959. A modified spectrophotometric determination of chymotrypsin, trypsin, and thrombin. Canadian journal of biochemistry and physiology. Vol. 37, No. 12, pp: 1393-1399.
18
Hussain, D.; Mateen, A. and Gatlin III, D.M., 2017. Alleviation of aflatoxin B1 (AFB1) toxicity by calcium bentonite clay: Effects on growth performance, condition indices and bioaccumulation of AFB1 residues in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture. Vol. 475, pp: 8-15.
19
Imani, A.; Bani, M.S.; Noori, F.; Farzaneh, M. and Moghanlou, K.S., 2017. The effect of bentonite and yeast cell wall along with cinnamon oil on aflatoxicosis in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): Digestive enzymes, growth indices, nutritional performance and proximate body composition. Aquaculture. Vol. 476, pp: 160-167.
20
Jadi, E.; Movahedinia, A.; Safahie, A.; Dezhandian, S. and Halajian, A., 2015. Study of the effects of diazinon pesticides on some of the biochemical parameters of serum of Caspian Sea fish. Journal of Animal Scienc. Vol. 28, No. 9, pp: 274-281.
21
Jantrarotai, W. and Lovell, R.T., 1990. Subchronic toxicity of dietary aflatoxin B1 to channel catfish. Journal of Aquatic Animal Health. Vol. 2, No. 4, pp: 248-254.
22
Khageh, GH.H. and Peyghan, R., 1386. Evaluation of some blood serum biochemical parameters of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) cultured in earthen ponds. Journal of Veterinary Research. Vol. 62, pp: 203-197.
23
Knox, D.; Cowey, C.B. and Adron, J.W., 1981. The effect of low dietary manganese intake on rainbow trout (Salmo gairdneri). British Journal of Nutrition.Vol. 46, pp: 495-501.
24
Ktari, N.; Khaled, H.B.; Nasri, R.; Jellouli, K.; Ghorbel, S. and Nasri, M., 2012. Trypsin from zebra blenny (Salaria basilisca) viscera: Purification, characterisation and potential application as a detergent additive. Food Chemistry. Vol. 130, No. 3, pp: 467-474.
25
Lillehoj, E.B.; Ciegler, A. and Hall, H.H., 1967. Aflatoxin B1 uptake by Flavobacterium aurantiacum and resulting toxic effects. Journal of Bacteriology. Vol. 93, No. 1, pp: 464-471.
26
Martínez, M.P.; González Pereyra, M.L.; Fernandez Juri, M.G.; Poloni, V. and Cavaglieri, L., 2018. Probiotic characteristics and aflatoxin B1 binding ability of Debaryomyces hansenii and Kazaschtania exigua from rainbow trout environment. Aquaculture research. Vol. 49, No. 4, pp: 1588-1597.
27
Martinez-Porchas M.; Martinez-Cordova, L.F. and Ramos-Eneiquez, R., 2009. Cortisol and Glucose: Reliable indicators of fish stress? Pan-American Journal of Aquatic Sciences. Vol. 4, No. 2, pp: 158-178.
28
Matejova, I.; Svobodova, Z.; Vakula, J.; Mares, J. and Modra, H., 2017. Impact of mycotoxins on aquaculture fish species: a review. Journal of the world aquaculture society. Vol. 48, No. 2, pp: 186-200.
29
Matejova, I.; Vicenova, M.; Vojtek, L.; Kudlackova, H.; Nedbalcova, K.; Faldyna, M.; Sisperova, E.; Modra, H. and Svobodova, Z., 2015. Effect of the mycotoxin deoxynivalenol on the immune responses of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Veterinarni Medicina. Vol. 60, No. 9, pp: 57-68.
30
Nespolo, R.F. and Rosenmann, M., 2002. Intraspecific allometry of haematological parameters in Basilichthys australis. Journal of Fish Biology. Vol. 60, No. 5, pp: 1358-1362.
31
Nomura, H.; Ogiso, M.; Yamashita, M.; Takaku, H.; Kimura, A.; Chikasou, M.; Nakamura, Y.; Fujii, S.; Watai, M. and Yamada, H., 2011. Uptake by dietary exposure and elimination of aflatoxins in muscle and liver of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of agricultural and food chemistry. Vol. 59, No. 9, pp: 5150-5158.
32
Panigrahi, A.; Kiron, V.; Puangkaew, J.; Kobayashi, T.; Satoh, S. and Sugita, H., 2005. The viability of probiotic bacteria as a factor influencing the immune response in rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Aquaculture. Vol. 243, No. 1-4, pp: 241-254.
33
Peltonen, K.D.; El‐Nezami, H.S.; Salminen, S.J. and Ahokas, J.T., 2000. Binding of aflatoxin B1 by probiotic bacteria. Journal of the Science of Food and Agriculture. Vol. 80, No. 13, pp: 1942-1945.
34
Rios, F.S.; Kalinin, A.L. and Rantin, F.T., 2002. The effects of long-term food deprivation on respiration and haematology of the neotropical fish Hoplias malabaricus. Journal of Fish Biology. Vol. 61, No. 1, pp: 85-95.
35
Saber, N.A., 1995. Depression of protein synthesis in tilapia by aflatoxin. Bull. Nat. Inst. Of Oceanogr. Egypt. Vol. 21, pp: 631-638.
36
Sahoo, P.K. and Mukherjee, S.C., 2001. Effect of dietary β-1, 3 glucan on immune responses and disease resistance of healthy and aflatoxin B1-induced immunocompromised rohu (Labeo rohita Hamilton). Fish & Shellfish Immunology. Vol. 11, No. 8, pp: 683-695.
37
Santacroce, M.P.; Conversano, M.C.; Casalino, E.; Lai, O.; Zizzadoro, C.; Centoducati, G. and Crescenzo, G., 2008. Aflatoxins in aquatic species: metabolism, toxicity and perspectives. Reviews in Fish Biology and Fisheries. Vol. 18, No. 1, pp: 99-130.
38
Selim, K.M.; El-hofy, H. and Khalil, R.H., 2014. The efficacy of three mycotoxin adsorbents to alleviate aflatoxin B 1-induced toxicity in Oreochromis niloticus. Aquaculture International. Vol. 22, No. 2, pp: 523-540.
39
Shahidi Yasaghi, S.A.; Mazandarani, M.; Ghorbani, A.; Saraei, H.: Ghorbani, R. and Soleimani, N., 1387. Determination of normal values of some blood serum factors (Electrolyte and nonelectrolyte) of Acipenser persicus. Journal of Fisheries. Vol. 2, No. 1, pp: 25-32.
40
Shihabi, Z.K. and Bishop, C., 1971. Simplified turbidimetric assay for lipase activity. Clinical chemistry. Vol. 17, No. 12, pp: 1150-1153.
41
Silva, J.F.; Espósito, T.S.; Marcuschi, M.; Ribeiro, K.; Cavalli, R.O.; Oliveira, V. and Bezerra, R.S., 2011. Purification and partial characterisation of a trypsin from the processing waste of the silver mojarra (Diapterus rhombeus). Food chemistry. Vol. 129, No. 3, pp: 777-782.
42
Suzer, C.; Çoban, D.; Kamaci, H.O.; Saka, Ş.; Firat, K.; Otgucuoğlu, Ö. and Küçüksari, H., 2008. Lactobacillus spp. bacteria as probiotics in gilthead sea bream (Sparus aurata, L.) larvae: effects on growth performance and digestive enzyme activities. Aquaculture. Vol. 280, pp: 140-145.
43
Tejada-Castaneda, Z.I.; Avila-Gonzalez, E.; Casaubon Huguenin, M.T.; Cervantes-Olivares, R.A.; Vásquez Peláez, C.; Hernandez-Baumgarten, E.M. and Moreno Martínez, E., 2008. Biodetoxification of aflatoxin contaminated chick feed. Poultry science. Vol. 87, No. 8, pp: 1569-1576.
44
Teniola, O.D.; Addo, P.A.; Brost, I.M.; Färber, P.; Jany, K.D.; Alberts, J.F.; Van Zyl, W.H.; Steyn, P.S. and Holzapfel, W.H., 2005. Degradation of aflatoxin B1 by cell free extracts of Rhodococcus erythropolis and Mycobacterium fluoranthenivorans sp. nov. DSM44556T. International journal of food microbiology. Vol. 105, No. 2, pp: 111-117.
45
Topic Popovic, N.; Strunjak‐Perovic, I.; Sauerborn Klobucar, R.; Barisic, J.; Jadan, M.; Kazazic, S.; Kesner Koren, I.; Prevendar Crnic, A.; Suran, J.; Beer Ljubic, B. and Matijatko, V., 2017. The effects of diet supplemented with Lactobacillus rhamnosus on tissue parameters of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Aquaculture research. Vol. 48, No. 5, pp: 2388-2401.
46
Wang, X.; Wang, Y.; Li, Y.; Huang, M.; Gao, Y.; Xue, X.; Zhang, H.; Encarnação, P.; Santos, G.A. and Gonçalves, R.A., 2016. Response of yellow catfish (Pelteobagrus fulvidraco) to different dietary concentrations of aflatoxin B1 and evaluation of an aflatoxin binder in offsetting its negative effects. Ciencias Marinas. Vol. 42, No. 1, pp: 15-29.
47
Yanbo, W. and Zirong, X., 2006. Effect of probiotics for common carp (Cyprinus carpio) based on growth performance and digestive enzyme activities. Animal feed science and technology. Vol. 127, pp: 283-292.
48
Ziaei-Nejad, S.; Rezaei, M.H.; Takami, G.A.; Lovett, D.L.; Mirvaghefi, A.R. and Shakouri, M., 2006. The effect of Bacillus spp. bacteria used as probiotics on digestive enzyme activity, survival and growth in the Indian white shrimp (Fenneropenaeus indicus). Aquaculture. Vol. 252, pp: 516-524.
49
ORIGINAL_ARTICLE
بهینه سازی تولید قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) از طریق استفاده از پساب استخرهای خاکی (مطالعه موردی: شهرستان بافق، استان یزد)
این تحقیق با هدف امکان بهره برداری از آب خروجی مزارع پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان در بافق انجام گرفت. برای این منظور 4 استخر خاکی پرورش قزل آلا هر یک به مساحت 0/5 هکتار درنظر گرفته شد. تیمارهای مورد مطالعه شامل: تیمار 1) پرورش در شرایط متعارف در استخرهای خاکی بدون استفاده مجدد از آب خروجی و تیمار، 2) پرورش در شرایط متعارف در استخرهای خاکی با استفاده مجدد از آب خروجی در حوضچه های گرد بتنی در انتهای استخرهای خاکی بودند. وزن اولیه رها سازی با میانگین 25 گرم و تراکم رها سازی در استخرهای خاکی یک عدد در مترمربع و در حوضچه های بتنی تیمار دو، 70 عدد در مترمربع درنظر گرفته شد. دوره پرورش حدود 4/5 ماه و در نیمه دوم سال انجام گرفت. میزان متوسط تولید در تیمار یک 2193 کیلوگرم و در مورد تیمار دو 2831 کیلوگرم بود. نتایج حاصل از این بررسی نشان داد که هیچ یک از فاکتورهای فیزیکوشیمیایی آب در حوضچه های بتنی محدودیت زا و بحرانی نبودند. مقایسه فاکتورهای رشد دو تیمار نشان داد که از لحاظ آماری تفاوت معنی داری بین دو تیمار از لحاظ بیوماس نهایی، درصد افزایش وزن، درصد بازماندگی نهایی و ضریب تبدیل غذا وجود دارد (0/05>p) و تیمار دوم از این لحاظ شرایط بهتری نسبت به تیمار اول داشت. براساس نتایج تحقیق، از طریق استفاده مجدد از آب خروجی استخرهای خاکی، امکان افزایش تولید به میزان حدود 31 % و امکان افزایش در آمد به میزان حدود 41% وجود دارد.
http://www.aejournal.ir/article_105940_3c00de169e98e19557657c80c0be1b2d.pdf
2020-06-21
161
168
10.22034/aej.2020.105940
قزل آلای رنگین کمان
استخر خاکی
آب لب شور
آب خروجی
حوضچه بتنی
اکرم
بمانی
a.bemani@ardakan.ac.ir
1
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه اردکان. اردکان، ایران
LEAD_AUTHOR
مرتضی
علیزاده
m_alizadeh47@yahoo.com
2
مرکز تحقیقات آبزیان آب های شور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بافق، ایران
AUTHOR
فلاحتی مروست، ع.؛ مجازی امیری، ب.؛ علیزاده، م. و ابطحی، ب.، 1384. مقایسه روند توسعه غدد جنسی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus myksis) در آب لب شور و شیرین. مجله علمی شیلات ایران. دوره 14، شماره 4، صفحات 113 تا 126.
1
علیزاده، م.، 1375. پرورش قزل آلای رنگین کمان در استخرهای خاکی آب لب شور. مجله آبزی پرور، انتشارات سازمان شیلات ایران. شماره 6، صفحات 45 تا 56.
2
علیزاده، م.، 1380. روابط متقابل سطوح مختلف پروتئین و انرژی جیره غذائی بر قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus myksis) در آب لب شور. پایان نامه دکتری تخصصی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران.
3
مشائی، ن.؛ علیزاده، م.؛ رجبی پور، ف. و سرسنگی، ح.، 1382. بررسی لیمنولوژیک استخرهای خاکی آب لب شور پرورش قزل آلا در منطقه بافق یزد. گزارش نهائی پروژه تحقیقاتی، موسسه تحقیقات شیلات ایران.
4
مهندسین مشاور یکم. 1386. پروژه تدوین برنامه بهره برداری از آب های شور، لب شور و غیرمتعارف در سطح حوضه های آبریز کشور. گزارش شماره 6 : سیاست ها و استراتژی های مناسب برای استفاده از آب های شور، لبشور و غیرمتعارف.
5
ناصری، ا.؛ عباسی، ف. و اکبری، م.، 1396. برآورد آب مصرفی در بخش کشاورزی به روش بیالن آب. مجله تحقیقات مهندسی سازه های آبیاری و زهکشی. دوره 18، شماره 68، صفحات 17 تا 32.
6
نفیسی، م.؛ شریفیان، م.؛ آخوندی،ع.؛ علیزاده، م.؛ خدارحمی، ر. و سرسنگی، ح.، 1383. افزایش تولید در استخرهای خاکی پرورش قزل آلا با استفاده از روش های هوادهی در منطقه بافق یزد. گزارش نهائی پروژه تحقیقاتی، موسسه تحقیقات شیلات ایران.
7
Edwards, P., 1990. Environmental issues in integrated agriculture-aquaculture and waste water-fed fish culture systems. Conference on environment and third world aquaculture development, Rockefeller Foundation, Bellagio, Italy.
8
EPA. 2006. National Recommended Water Quality Criteria.
9
Rashid, S.; Li, Q.A.; Carr, R. and Buechiler, S., 2005. Managing wastewater agriculture to improve livelihoods and environmental quality in poor countries. Irrigation and Drainage. Vol. 54, pp: 11-22.
10
Rommelmann, D.W.; Duranceu, S.J.; Stahl, M.W.; Kamnikar, C. and Gonzales, R.M., 2004. Industrial Water Quality Requirements Reclaimed Water, AWWA Research Foundation. 82- Rhoades, J.D., Kandiah.
11
ORIGINAL_ARTICLE
اثر عصاره گیاه سالیکورنیا .Salicornia sp بر فعالیت آنزیم های کبدی و شاخص های آنتی اکسیدانی ماهی کفال خاکستری (1785 ,Mugil cephalus Linnaeus)
گیاه سالیکورنیا (.Salicornia sp) یکی از گیاهانی است که جنبه های دارویی موثری برای آن قائل شده اند. هدف از مطالعه حاضر، بررسی اثر عصاره الکلی گیاه سالیکورنیا (.Salicornia sp) بر فعالیت آنزیم های کبدی (آسپارتات آمینوترانسفراز (AST)، آلانین آمینوترانسفراز (ALT) و آلکالین فسفاتاز (ALP)) و شاخص های آنتی اکسیدانی (سوپراکسید دیسموتاز (SOD)، گلوتاتیون پراکسیداز (GPX)، مالون دی آلدئید (MDA) و کاتالاز (CAT)) ماهی کفال خاکستری (Mugil cephalus) به مدت 60 روز می باشد. در این مطالعه، تعداد 240 قطعه ماهی با میانگین وزنی 0/43±8/42 گرم در یک طرح کاملاً تصادفی با 4 تیمار آزمایشی و 3 تکرار (با تعداد 20 قطعه در هر تکرار) مورد آزمایش قرار گرفتند. تیمار شاهد (بدون عصاره گیاه) و تیمارهای آزمایشی 2، 3 و 4 به ترتیب دارای 500، 1000 و 1500 میلی گرم عصاره گیاه در هر کیلوگرم عصاره گیاه در غذا بودند. در پایان آزمایش، بیش ترین شاخص های آنتی اکسیدانی CAT، GPX و کم ترین شاخص آنتی اکسیدانی MDA و آنزیم های ALT ،AST و ALP در تیمار حاوی 500 و 1000 میلی گرم بر کیلوگرم عصاره الکلی گیاه مشاهده شد که با تیمار شاهد دارای تفاوت معنی دار بود (0/05>P). لذا با توجه به نتایج به دست آمده، به منظور کاهش اکسیداسیون لیپید و بهبود سلامت کبد، استفاده از عصاره عصاره الکلی گباه سالیکورنیا به عنوان مکمل غذایی مهم برای ماهی کفال خاکستری توصیه می شود.
http://www.aejournal.ir/article_106603_65192b7b938fe0c7bc15729aabd877f2.pdf
2020-06-21
169
176
10.22034/aej.2020.106603
ماهی کفال خاکستری
عصاره گیاه سالیکورنیا
رادیکال های آزاد
استرس اکسیداتیو
پریا
اکبری
paria.akbary@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
LEAD_AUTHOR
اسماء
بلوچ امین
2
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
AUTHOR
زهرا
امینی خویی
zahraamini.41@gmail.com
3
مرکز تحقیقات آبهای دور، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، چابهار، ایران
AUTHOR
Agarwal, A. and Sekhon, L., 2010. The role of antioxidant therapy in the treatment of male infertility. Human Fertility. Vol. 13, pp: 217-225.
1
Akhani, H., 2007. Diversity, biogeography, and photosynthetic pathways of Argusia and Heliotropium (Boraginaceae) in South-West Asia with an analysis of phytogeographical units. Botanical Journal of the Linnean Society. Vol. 155, pp: 401-425.
2
Akrami, R.; Gharaeib, A.; Razeghi Mansourc, M. and Galeshi, A., 2015. Effects of dietary onion (Allium cepa) powder on growth, innateimmune response and hematoebiochemical parameters of beluga (Huso huso Linnaeus, 1754) juvenile. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 45, pp: 828-834.
3
Antache, A.; Crister, V.; Iulia, R.; Grecu, I.R.; Ion, S.P. and Mocanu, M.C., 2013. The Influence of Rosemary Sea Buckthorn and Ginger on Oxidative Stress at Oreochromis niloticus Reared in a Recirculating Aquaculture System. Bulletin UASVM Animal Science and Biotechnologies. Vol. 70, pp: 110-116.
4
Atli, G. and Canli, M., 2010. Response of antioxidante systemof freshwater fish Oreochromis niloticus to acute and chronic metal (Cd, Cu, Cr, Zn, Fe) exposures. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 73, pp: 1884-1889.
5
Bhardwaj, S.; Srivastava, M.K.; Kapoor, U. and Srivastava, A., 2010. 90 days oral toxicity of imidacloprid in female rats: morphological, biochemical and histopathological evaluations, Food Chemistry and Toxicology. Vol.48, pp: 1185-1190.
6
Baluchnejad mojarad, T.; Roghani, M. and Mafakheri, M., 2010. Neuroprotective effect of silymarin in 6-hydroxydopamine hemi-parkinsonian rat: involvement of estrogen receptors and oxidative stress. Neuroscience letter. Vol. 480, pp: 206-210.
7
Byun, D.S.; Kwon, M.N.; Hong, J.H. and Jeong, D.Y., 1994. Effects of flavonoids and α-tocopherol on the oxidation of n-3 polyunsaturated fatty acids. Antioxidizing effect of catechin and α-tocopherol in rat with chemically induced lipid peroxidation. Bulletin of Korean Fish Society. Vol. 27, pp: 166-172.
8
Choi, D.; Lim, G.S.; Piao, Y.L.; Choi, O.Y.; Cho, K.A. and Park, C.B., 2014. Characterization, stability, and antioxidant activity of Salicornia herbaciea seed oil. Korean Journal of Chemical Engineering. Vol. 31, pp: 2221-2228.
9
Chong, A.S.C.; Hashim, R.M.; Chow-Tang, L. and Ali, A.B., 2002. Parrtial characterization and activities of protease from the digestiove tract of discus fish (Symphysodon aequifasciata). Aquacultur. Vol. 203, pp: 321-331.
10
Crespy, V. and Williamson, G., 2004. A Review of the Health Effects of Green Tea Catechins in inivo Animal Models. International Research Council on Food Nutrition and Cancer. Vol. 134, pp: 3431-3440.
11
Dadras, H.; Hayatbakhsh, M.R.; Shelton, W.L. and Golpour, A., 2016. Effects of dietary administration of Rose hip and Safflower on growth performance, haematological, biochemical parameters and innate immune response of Beluga, Huso huso (Linnaeus, 1758). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 59, pp: 109-114.
12
Das, K.M. and Tripathi, S.D., 1991. Studies on the digestive enzymes of grass carp, Ctenopharhyngodan idella. Aquaculture. Vol. 92, pp: 21-32.
13
Dazy, M.; Jung, V.; Ferard, J. and Masfaraud, J., 2008. Ecological recovery of vegetation on a coke-factory soil: Role of plant antioxidant enzymes and possible implication in site restoration. Chemosphere. Vol. 74, pp: 57-63.
14
Essaidi, I.; Brahmi, Z.; Snoussi, A.; Haj Koubaier, H.B.; Casabianca, H.; Abe, N.; El Omri, A.; Chaabouni, M.M. and Bouzouita, N., 2013. Phytochemical investigation of Tunisian Salicornia herbacea L., antioxidant, antimicrobial and cytochrome P450 (CYPs) inhibitory activities of its methanol extract. Food Control. Vol. 32, pp: 125-133.
15
Harikrishnan, R.; Nisha, M.R. and Balasundaram, C., 2003. Hematological and biochemical parameters in common carp, Cyprinus carpio, following herbal treatment for Aeromonas hydrophila infection. Aquaculture. Vol. 221, pp: 41-50.
16
Hall, J.E., 2010. Textbook of medical physiology, 12 th ed. New York, Saunders press. pp: 999-1006.
17
Juránek, I. and Bezek, S., 2005. Controversy of free radical hypothesis: reactive oxygen species--cause or consequence of tissue injury? General Physiology and Biophysics. Vol. 24, pp: 263-278.
18
Kang, S.; Kim, D.; Lee, B.H.; Kim, M.R.; Chiang, M. and Hong, J., 2011. Antioxidant Properties and Cytotoxic Effects of Fractio Glasswort (Salicornia herbacea) Seed Extracts on Human Cells. Food Science and Biotechnology. Vol. 20, No. 1, pp: 115-122.
19
Kavitha, P.; Ramesh, R.; Bupesh, G.; Stalin, A. and Subramanian, P., 2011. Hepatoprotective activity ofTribulus terrestrisextract against acetaminophen-induced toxicity in a freshwater fish (Oreochromis mossambicus). In Vitro Cellular & Developmental Biology Animal. Vol. 47, pp: 698-706.
20
Kharrati-Koopaee, H.; Heydarian, Z.; Shekarforoush, S.Sh.; Golmakani, M.T.; kharrati-kopaei, M. and Gorji Makhsous, S., 2016. The antibacterial activities of six organic solvent extracts of Salicornia iranica against Salmonella typhimurium. Iranian Journal of Veterinary Science and Technology. Vol. 8, pp: 25-26.
21
Lawrence, R.A. and Burk, R.F., 1976. Gluthatione peroxidase activity in selenium deficiency rat liver biochemical and biophysics research communitations. Vol. 71, pp: 952-958.
22
Liu, F.; Shi, H.; Guo, Q.; Yu, Y.; Wang, A.; Lv, F. and Shen, W., 2016. Effects of astaxanthin and emodin on the growth, stress resistance and disease resistance of yellow catfish (Pelteobagrus fulvidraco). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 51, pp: 125-135.
23
Lynn, A.; Collins, A.; Fuller, Z.; Hillman, K. and Ractcliffe, B., 2006. Cruciferous vegtables and colo- rectal cancer. Proceedings of the Nutrition Society. Vol. 65, pp: 135-144.
24
Magnadottir, B., 2006. Innate immunity of fish (overview). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 20, pp: 137-151.
25
Morales, A.E.; Pérez-Jiménez, A.; Hidalgo, M.C.; Abellán, E. and Cardenete, G., 2004. Oxidative stress and antioxidant defenses after prolonged starvation in Dentex dentex liver. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 139, pp: 153-161.
26
Osawa, T. and Kato, Y., 2005. Protective role of antioxidative food factors in oxidative stress caused by hyperglycemia. Annals of the New York Academy of Sciences. Vol. 1043, pp: 440-451.
27
Patel1, S., 2016. Salicornia: evaluating the halophytic extremophile as a food and a pharmaceutical candidate. Biotechnology. Vol. 6, pp: 2-10.
28
Rosenkranz, G.K., 2009. Modeling laboratory data from clinical trials. Computational Statistics and Data Analysis. Vol. 53, pp: 812-819.
29
Sies, H. and Stahl W., 1995. Vitamins E and C, beta carotene, and other carotenoids as antioxidants. American Journal of Clinical Nutrition. Vol. 62, pp: 1315-1321.
30
Sönmez, A.Y.; Bilen, S.; Alak, G.; Hisar, O.; Yanık, T. and Biswas, G., 2015. Growth performance and antioxidant enzyme activities in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) juveniles fed diets supplemented with sage, mint and thyme oils. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 41, pp: 165-175.
31
Soochan, D.; Keough, V.; Wanless, I. and Molinari, M., 2012. Intra and extra-hepatic cystadenoma of the biliary duct. Review of literature and radiological and pathological characteristics of a very rare case. BMJ Case Report. Vol. 4, pp: 2012-2014.
32
Vahedi, A., 2015. Investigation of oral administration of ginger extract (Zingiber officinale) on growth performance, blood index and metabolic enzymes in Huso huso. Thesis of MS.c Azad University of Azad Shahr. 67 p.
33
Valavanidis, A.; Valchogianni, T. and Fiotakis, C., 2009. 8- hydroxy-2- deoxyguanosine 98-OHdG): A critical biomarker of oxidative strss and carcinogenesis. Journal of Environmental Science and Health Part. Vol. 27, pp: 120-139.
34
Valko, M.; Rhodes, C.J.; Monco, J.; Izakovic M. and Mazur, M., 2006. Free radicals, metals and antioxidants in oxidative stress-induced cancer. Chemico- Biological Interaction. Vol. 160, pp: 1-40.
35
Young I.S. and Woodside, J., 2001. Antioxidants in health and disease. Journal of clinical pathology. Vol. 54, pp: 176-186.
36
Winterbourn, C.; Hawkins, R.; Brian, M. and Carrell, R.W., 1975. Estimation red cell superoxidase dismu tase activity, Journal of Laboratory chinease in. The Medicine. Vol. 85, No. 2, pp: 337-340.
37
Zarifmanesh, T. and Zorreieh Zahra, J., 2012. Use of Phytobiotics in development of Aquaculture. First National Conference on Sustainable Development Strategies. 7 p.
38
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر دو پربیوتیک ای مکس اولترا و سلماناکس مایع به صورت تلقیح بر کیفیت آب، عملکرد رشد و ترکیبات لاشه بچه ماهیان انگشت قد کپورمعمولی (Cyprinus carpio) در سیستم بیوفلاک
مطالعه حاضر باهدف بررسی تاثیر دو پربیوتیک تجاری ای مکس اولترا و سلماناکس مایع در تلقیح سیستم بیوفلاک (BFT) بر پارامترهای کیفی آب، عملکرد رشد، کارایی تغذیه و ترکیبات شیمیایی لاشهی بچه ماهیان کپور معمولی (Cyprinus carpio) انجام شد. تعداد 240 عدد بچه ماهی کپور معمولی با میانگین وزنی 0/70±4/09 گرم با دو غلظت 0/1 و 0/2 میلی گرم از هر یک از دو پربیوتیک مذکور در هر لیتر از سیستم بیوفلاک به همراه یک گروه شاهد که فاقد هر گونه ماده افزودنی بود، در قالب طرح کاملاً تصادفی به مدت 40 روز غذادهی شدند. در پایان دوره آزمایش، نتایج تفاوت معنی داری در پارامترهای کیفی آب در تیمارهای تغذیه کرده از پربیوتیک در سیستم بیوفلاک در مقایسه با گروه شاهد نشان داد (0/05>p). اندازه گیری پارامترهای رشد شامل: وزن نهایی، طول نهایی، سرعت رشد وزنی، سرعت رشد طولی، نسبت کارایی پروتئین، نسبت کارایی چربی و ضریب تبدیل غذایی نیز دارای اختلافی معنی داری در مقایسه با گروه شاهد بودند (0/05>p). بیش ترین میزان پروتئین خام لاشه (66/61 درصد) و کم ترین درصد چربی خام لاشه (17/89 درصد) نیز در تیمار تغذیه کرده از 0/2 میلی لیتر پربیوتیک سلماناکس مایع تلقیح شده در هر لیتر از سیستم بیوفلاک به ثبت رسید. در مجموع، نتایج این تحقیق نشان داد که استفاده از پربیوتیک های ای مکس اولترا و سلماناکس به صورت تلقیح به سیستم آب پرورش بچه ماهیان کپور معمولی به صورت تکنولوژی بیوفلاک، دارای تأثیرات مثبتی بر پارامترهای کیفی آب، عملکرد رشد، کارایی تغذیه و ترکیبات شیمیایی لاشه این گونه دارد.
http://www.aejournal.ir/article_106608_7c22ac689f0a0a8eb22c5b4ea74661f7.pdf
2020-06-21
177
188
10.22034/aej.2020.106608
کپورمعمولی
بیوفلاک
پربیوتیک
تلقیح
نیتروژن آمونیاکی
پروتئین خام
آرزو
خسروی نجف آبادی
jafaryan.h@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
حجت الله
جعفریان
hojat.jafaryan@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
LEAD_AUTHOR
حسین
آدینه
adineh.h@gonbad.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
محمد
هرسیج
m_harsij80@gonbad.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
اکرمی، ر.؛ چیت ساز، ح.؛ رزاقی منصور، م. و قاسم پور علمدار، ا.، 1392. تأثیر پربیوتیک ای مکس بر شاخص های رشد، بازماندگی و ترکیب بدن قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله علوم تکثیر و آبزی پروری. شماره 1، صفحات 9 تا 20.
1
ایری، م.؛ بیواره، م.و.؛ رنجدوست، م.؛ جفریان، س. و جعفریان، ح.، 1396. بررسی اثرات سطوح مختلف پربیوتیک ای مکس اولترا (مخمر Saccharomyces cerevisiae) بر پارامترهای رشد، بقا، کارایی تغذیه و مقاومت در برابر استرس های محیطی در بچه ماهیان نورس کپور معمولی (Cyprinus carpio Linnaeus. 1758). مجله بهره برداری و پرورش آبزیان. دوره 7، شماره 1، صفحات 11 تا 25.
2
بخشی، ف.؛ ملک زاده ویایه، ر. و حسین نجد گرامی، ا.، 1392. بررسی بازدهی استفاده از سیستم تولید توده زیستی (Biofloc) در پرورش متراکم ماهی کپور معمولی .(Cyprinus carpio) مجله محیط زیست جانوری. دوره 6، شماره 3، صفحات 45 تا 52.
3
بیواره، م.ح. و جعفریان، ح.، 1395. تعیین عملکرد پارامترهای رشد، بازماندگی و مقاومت در برابر استرس های محیطی در لاروهای کپور معمولی F1 (Cyprinus carpio) تغذیه شده با سطوح مختلف مخمر Saccharomyces cerevisiae. مجله علوم تکثیر و آبزی پروری. دوره 4، شماره 10، صفحات 11 تا 33.
4
بیواره، م.ر. و جعفریان، ح.، 1397. تأثیر دو پربیوتیک تجاری ای مکس، سلماناکس مایع و مخلوط آنها باهم در جیره غذایی بچه ماهیان نورس کپور معمولی (Cyprinus carpio) بر عملکرد رشد، کارایی تغذیه و میزان مقاومت در برابر استرس های محیطی. مجله توسعه آبزی پروری. دوره 12، شماره 4، صفحات 1 تا 16.
5
جعفریان، س.؛ قاسم زاده، ج. و جعفریان، ح.، 1395. بررسی تأثیر پروبیوتیک مولتی بهسیل و پربیوتیک بهسام بر عملکردهای تغذیه، میزان انرژی اتلافی و نرخ ترشح آمونیاک و اوره در نوزادان ماهی آمور (Ctenophyryngodon idell). فصلنامه تغذیه و بیوشیمی آبزیان. دوره 3، شماره 1، صفحات 1 تا 15.
6
جویباری، م.؛ قبادی، ش. و وطن دوست، ص.، 1396. تأثیر سطوح مختل پربیوتیک A-Max بر شاخص های رشد، بازماندگی و ترکیبات لاشه در بچه ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله توسعه آبزی پروری. دوره 11، شماره 1، صفحات 63 تا 75.
7
رنجدوست، م.؛ جعفریان، ح.ا.؛ هرسیج، م. و قلی پورکنعانی، ح.، 1396. اثر پریبیوتیک سلماناکس بر پارامترهای خون بچه ماهی کپورمعمولی (1758 ,Cyprinus carpio L. Linnaeus) در برابر تنش حمل و نقل. مجله محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 4، صفحات 214 تا 207.
8
رنجدوست، م.: جعفریان، ح.ا.؛ هرسیج، م. و قلی پورکنعانی، ح.، 1397. تأثیر پربیوتیک سلماناکس و پنج گونه از پروبیوتیکهای باسیلی بر کاهش استرس حمل و نقل کپور معمولی (Cyprinus carpio) در شوری های مختلف. مجله علوم آبزی پروری. دوره 6، شماره 9، صفحات 39 تا 50.
9
خانجانی، م.ح.؛ علیزاده، م.؛ سجادی، م.م. و سوری نژاد، ا.، 1394. تاثیر منابع مختلف کربن بر کیفیت آب، عملکرد رشد و بقای میگوی سفید غربی (Litopenaeus vannamei Boone, 1931). در سیستم پرورش بدون تعویض آب. مجله علمی شیلات ایران. دوره 24، شماره 3، صفحات 77 تا 91.
10
Akrami, R.; Karimabadi, K.; Mohammadzadeh, H. and Ahmadifar, E., 2009. Effect of dietary mannanoligosaccharide on growth performance, survival, body composition and salinity stress resistance in Kutum (Rutilus frisii kutum) fry stage. Journal of Marine Science and Technology. Vol. 8, pp: 47-57.
11
Anand, P.S.; Kohli, M.P.S.; Kumar, S.; Sundaray, J.K.; Roy, S.D.; Venkateshwarlu, G.; Sinha, A. and Pailan, G.H., 2014. Effect of dietary supplementation of biofloc on growth performance and digestive enzyme activities in Penaeus monodon. Aquaculture. Vol. 418-419, pp: 108-115.
12
Anand, P.S.S.; Kumar, S.; Panigrahi, A.; Ghoshal, T.K.; Dayal, J.S.; Biswas, G.; Sundaray, J.K.; De, D.; Raja, R.A.; Deo, A.D.; Pillai, S.M. and Ravichandran, P., 2013. Effects of C: N ratio and substrate integration onperiphyton biomass, microbial dynamics and growth of Penaeus monodon juveniles. Aquaculture International. Vol. 21, pp: 511-524.
13
AOAC. 1990. In: Horwitz, W., (Ed). Official Methods of Analysis of Official Analytical Chemists (AOAC). Vol. 1, 15th ed. Assoc.Official Analytical Chemists. Washington DC. 1963 p.
14
APHA. 1998. Standard Methods for the Examination of the Water and Wastewater, 22nd ed. American Public Health Association, Washington, DC.
15
Asaduzzaman, M.; Wahab, M.A.; Verdegem, M.C.J.; Huque, S.; Salam, M.A. and Azim, M.E., 2008. C/N ratio control and substrate addition for periphytondevelopment jointly enhance freshwater prawn Macrobrachium rosenbergiiproduction in ponds. Aquaculture. Vol. 280, pp: 117-123.
16
Atar, H.H. and Ates, M., 2009. The effects of commercial diet supplemented withmannanoligosaccharide (MOS) and vitamin B12 on the growth and body composition of thecarp (Cyprinus carpio L. 1758). Journal of Animal and Veterinary Advances. Vol. 8, pp: 2251-2255.
17
Avnimelech, Y., 1999. Carbon/nitrogen ratio as a control element in aquaculture systems. Aquaculture. Vol. 176, No. 3, pp: 227-235.
18
Avnimelech, Y., 2007. Feeding with microbial flocs by tilapia in minimaldischarge bioflocs technology ponds. Aquaculture. Vol. 264, No. 1, pp: 140-147.
19
Avnimelech, Y., 2009. Biofloc technology a practical guide book. The world aquaculture society, Baton Rouge, Louisiana. (United States).
20
Avnimelech, Y., 2012. Biofloc technology: a practical guide book, 2nd edition. The world aquaculture society, Baton Rouge, Louisiana, United States. 272 p.
21
Azim, M.E. and Little, D.C., 2008. The biofloc technology (BFT) in indoor tanks: Water quality, biofloc composition, and growth and welfare of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture. Vol. 283, pp: 29-35.
22
De Schryver, P. and Verstraete, W., 2009. Nitrogen removal from aquaculture pond water by heterotrophic nitrogen assimilation in lab-scale sequencing batchreactors. Bioresource Technology. Vol. 100, No. 3, pp: 1162-1167.
23
De Schryver, P.; Crab, R.; Defoirdt, T.; Boon, N. and Verstraete, W., 2008. The basics of bio-flocs technology: the added value for aquaculture. Aquaculture. Vol. 277, pp: 125-137.
24
Dimitroglou, A.; Merrifield, D.L.; Spring, P.; Sweetman, J.; Moate, R. and Davies, S.J., 2010. Effects of mannan oligosaccharide (MOS) supplementation on growth performance, feed utilization, intestinal histology and gut microbiota of gilthead sea bream (Sparus aurata). Aquaculture. Vol. 300, pp: 182-188.
25
Ekasari, J.; Angela, D.; Waluyo, S. H.; Bachtiar, T.;Surawidjaja, E. H.; Bossier, P. and Schryver, P., 2014. The size of biofloc determines the nutritional composition and the nitrogen recovery by aquaculture animals. Aquaculture. Vol. 426-427, pp: 105-111.
26
Emerenciano, M.; Ballester, E.L.C.; Cavalli, R.O. and Wasielesky, W., 2012. Biofloc technology application as a food source in a limited water exchange nursery system for pink shrimp Farfantepenaeus brasiliensis (Latreille, 1817). Aquaculture Research. Vol. 43, pp: 447-457.
27
Emerenciano, M.; Gaxiola, G. and Cuzon, G., 2013. Biofloc Technology: A reviewfor aquaculture application and animal food industry. Open access peer-reviewed chapter. Submitted: December 6th 2011 Reviewed: September 28th 2012. Published: 30th. pp: 301-328. (available in http://dx.doi.org/10.5772/53902).
28
Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO). 2016. The Stateof World Fisheries and Aquaculture, Contributing to food security and nutrition for all. Rome. 191 p. Available at http://www.fao.org.
29
Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO). 2012. Fisheries global information system. FAO Fisheries and Aquaculture Department, Food and Agriculture Organization of the United Nations Rome.
30
Gibson, G.R., 1998. Dietary modulation of the Human Gut Microflora using the prebiotics oligofructose and Inulin. Nutritional and Health Benefits of Inulin and Oligofructose conference, May 18-19, Bethesda. pp: 25-27.
31
Gultepe, N.; Salnur, S.; Hossu, B. and Hisar, O., 2010. Dietary supplementation with Mannanoligosaccharides (MOS) from Bio-Mos enhances growth parameters and digestive capacity of gilthead sea bream (Sparus aurata). Aquaculture Nutrition. Vol. 17, pp: 482-487.
32
Hargreaves, J.A., 1998. Nitrogen biogeochemistry of aquaculture ponds. Aquaculture. Vol. 66, No. 3-4, pp: 181-212.
33
Haridas, H.; Verma, A.K.; Rathore, G.; Prakash, C.; Sawant, P.B. and Babitha Rani, A.M., 2017. Enhanced growth and immuno‐physiological response of Genetically Improved Farmed Tilapia in indoor biofloc units at different stocking densities. Aquaculture Research. Vol. 48, pp: 4346-4355.
34
Helland, S.J. Grisdale, B. and Nerland, S., 1996. A simple method for the measurement of daily feed intake of groups of fish in tanks. Aquaculture. Vol. 139, pp: 157-163.
35
Hepher, B., 1988. Nutrition of Pond Fish. Cambridge Univ. Press, Cambridge, UK. 388 p.
36
Hevroy, E.M.; Espe, M.; Waagbo, R.; Sandness, K.; Rund, M. and Hemer,G.I., 2005. Nutrition utilization in Atlantic salmon (Salmo salar) fed increased level of fish protein hydrolysate during a period of fast growth. Aquaculture Nutrition. Vol. 11, pp: 301-313.
37
Irshad Ahmad, H.; Verma, A.K.; Babitha Rani, A.M.; Rathore, G.; Saharan, N. and Gora, A.H., 2016. Growth, non-specific immunity and disease resistance of Labeo rohita against Aeromonas hydrophila in biofloc systems using different carbon sources. Aquaculture. Vol. 456, pp: 61-67.
38
Kim, S.K.; Pang, Z.; Seo, H.C.; Cho, Y.R.; Samocha, T. and Jang, I.K., 2014. Effect of bioflocs on growth and immune activity of Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei postlarvae. Aquaculture Research. Vol. 45, pp: 362-371.
39
Lashkarbolouki, M.; Jafaryan, H.; Keramat, A.; Farhangi, M. and Adineh, H., 2012. The effect of yeast enriched (Saccharomyces cerevisiae) Daphnia magna on growth and stress resistance in Persian sturgeon (Acipenser persicus) Larvae. Iranian journal of natural resources. Vol. 64, No. 4, pp: 345-355.
40
Leonard, N.; Blancheton, J.P. and Guiraud, J.P., 2000. Populations of heterotrophic bacteria in an experimental recirculating aquaculture system. Aquacultural Engineering. Vol. 22, No. 1, pp: 109-120.
41
Lim, C.; Klesius, P.H.; Li, M.H. and Robinson, E.H., 2000. Interaction between dietary levels of iron and vitamin C on growth, haematoloy, immune response and resistance of channel catfish (Ictaluruspunctatus) to Edwardsiella ictaluri challenge. Aquaculture. Vol. 185, pp: 313-327.
42
Long, L.; Yang, J.; Li, Y.; Guan, C. and Wu, F., 2015. Effect of biofloc technology on growth, digestive enzyme activity, hematology, and immune response of genetically improved farmed tilapia (oreochromis niloticus). Aquaculture. Vol. 448, pp: 135-141.
43
Luo, G.; Gao, Q.; Wang, C.; Liu, W.; Sun, D.; Li, L. and Tan, H., 2014. Growth, digestive activity, welfare, and partial cost-effectiveness of genetically improved farmed tilapia (Oreochromis niloticus) cultured in a recirculating aquaculture system and an indoor biofloc system. Aquaculture. Vol. 422, pp: 1-7.
44
Magondu, E.; Charo-Karisa, H. and Verdegem, M.C.J., 2013. Effect of C/N ratio levels and stocking density of Labeo victorianus on pond environmental quality using maize flour as a carbon source. Aquaculture. Vol. 410, No. 411, pp: 157-163.
45
Mahanand, S.S.; Moulick, S. and Srinivasa Rao, P., 2013. Water Quality and Growth of Rohu, Labeo rohita, in a Biofloc System. Journal of Applied Aquaculture. Vol. 25, pp: 121-131.
46
Miranda-Filho, K.C.; Pinho, G.L.L. and Wasielesky, W.J., 2009. Long-term ammonia toxicity to the pink-shrimp Farfantepenaeus paulensis. Comp.Biochem. Comparative Biochemistry and Physiology, Part C: Toxicology & Pharmacology. Vol. 150, No. 3, pp: 377-382.
47
Najdegerami, E.; Bakhshi, F. and Lakani, F.B., 2016. Effects of bioflocon growth performance, digestive enzyme activities and liver histology ofcommon carp (Cyprinus carpio L.) fingerlings in zero-water exchangesystem, Fish Physiology and Biochemistry. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 42, No. 2, pp: 457-465.
48
Prabu,E.; Rajagopalsamy, C.B.T.; Ahilan, B.; Santhakumar, R. and Thangarani, A.J., 2017. Influence of Biofloc meal and Lysine supplementation on the growth performances of GIFT tilapia. Journal of Entomology and Zoology Studies. Vol. 5, No. 5, pp: 35-39
49
Qiao, S.F.; Liu, H.Y. and Qi, X.Y., 2006. The accumulation and toxicity of ammonia nitrogen in aquaculture water. Hebei Fish. Vol. 1, pp: 20-22.
50
Ray, A.J.; Seaborn, G.; Leffler, J.W.; Wilde, S.B.; Lawson. A. and Browdy, C.L., 2010. Characterization of microbial communities in minimal-exchange, intensive aquaculture systems and the effects of suspended solidsmanagement. Aquaculture. Vol. 310, pp: 130-138.
51
Ringo, E. and Gatesoupe, F.J., 1998. Lactic Acid Bacteria in fish: a review. Aquaculture. Vol. 160, pp: 177-203.
52
Ringo, E. and Vadestin, O., 1998. Colonization of Vibrio Pelagius and Aeromonas caviae in early developing turbot, Scophthalmous maximus (L.) larvae. Journal of Applied Microbiology. Vol. 84, pp: 227-233.
53
Rodrigues, M.S.; Bolívar, N.; Legarda, E.C.; Guimarães, A.M.; Guertlerd, C.; do Espírito Santo, C.M.; Mouriño, J.L.P.; Seiffert, W.Q.; Fracalossic, D.M. and do Nascimento Vieira, F., 2018. Mannoprotein dietary supplementation for Pacific white shrimp raised in biofloc systems. Aquaculture. Vol. 488, No. 10, pp: 90-95.
54
Sontakke, R. and Haridas, H., 2018. Economic Viability of Biofloc Based System for the Nursery Rearing of Milkfish (Chanos chanos). International journal of current microbiology applied science. Vol. 7, No. 8, pp: 2960-2970.
55
Sotoudeh, E.; Abedian kenari, A. and Habibi Rezaei, M., 2010. Growth response, body composition and fatty acid profile of Caspain brown trout (Salmo trutta Caspius) juvenile fed diets containing different levels of soybean phosphatidylcholine. Aquaculter International. Aquaculture International. Vol. 19, No. 4, pp: 611-623.
56
Taw, N., 2010. Biofloc technology expanding at white shrimp farms. GlobalAdvocate may/june, 24–26 (available in http://www.gaalliance.org/mag/May _June 2010.pdf).
57
Wang, G.; Yu, E.; Xie, J.; Yu, D.; Li, Z.; Luo, W.; Qiu, L. and Zheng, Z., 2015. Effect of C/N ratio on water quality in zero-water exchange tanks and the biofloc supplementation in feed on the growth performance of crucian carp, Carassius auratus. Aquaculture. Vol. 443, pp: 98-104.
58
Wang, J.C.; Chang, P.S. and Chen, H.Y., 2008. Differential time-series expression of immunerelated genes of Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei in response to dietary inclusion of β-1,3glucan. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 24, pp: 113-121.
59
Widanarni, W.; Ekasari, J. and Maryam, S., 2012. Evaluation of biofloc technology application on water quality and production performance of Red Tilapia Oreochromis sp. Cultured at different stocking densities. HAYATI Journal of Biosciences. Vol. 19, pp: 73-80.
60
Xia, Y.; Yu, E.M. and Xie, J., 2012. Analysis of bacterial community structure of bio-floc by PCR-DGGE. Journal of Fishery Sciences of China. Vol. 36, No. 10, pp: 1563-1571.
61
Xu, W.J. and Pan, L.Q., 2014. Evaluation of dietary protein level on selectedparameters of immune and antioxidant systems, and growth performance ofjuvenile Litopenaeus vannamei reared in zero-water exchange biofloc basedculture tanks. Aquaculture. Vol. 426, No. 427, pp: 181-188.
62
Yuvarajan, P.; Felix, S.; Antony, C.; Gopalakannan, A.; Menaga, M. and Ezhilmathi, S., 2018. Nursery intensive rearing of GIFT tilapia in outdoor lined pond utilizing aerobic microbial floc technology (AMFT). Journal of Entomology and Zoology Studies. Vol. 6, No. 3, pp: 705-709.
63
Zhang, N.; Luo, G.; Tan, H.; Liu, W. and Hou, Z., 2016. Growth, digestive enzyme activity and welfare of tilapia (Oreochromis niloticus) reared in a biofloc-based system with poly-β-hydroxybutyric as a carbon source. Aquaculture. Vol. 464, pp: 710-717.
64
Zhao, Z.G.; Xu, Q.Y.; Luo, L.; Yin, J.S. and Wang, C.A., 2013. Effect of adding carbon source on growth of fish and water quality in Songpu mirror Carp (Cyprinus specularis Songpu) pond. Journal of Northeast Agricultural University. Vol. 44, No. 9, pp: 105-112.
65
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر پودر جلبک اسپیرولینا و گل میخک بر عملکرد رشد و ترکیب لاشه بچه ماهی انگشت قد کپورمعمولی (Cyprinus carpio)
در این مطالعه به منظور بررسی اثرات پودر جلبک اسپیرولینا و گل میخک بر عملکرد رشد و کیفیت لاشه، بچه ماهیان انگشت قد کپور معمولی (میانگین وزن 16/20 گرم) با سطوح مختلف پودر اسپیرولینا (5، 10 و 15 درصد) و گل میخک (2، 4 و 6 درصد) بر حسب درصد جیره و تیمار شاهد به مدت 8 هفته تغذیه شدند. پس از اتمام دوره، ماهیان زیست سنجی شده و شاخص های رشد و کیفیت لاشه سنجیده شد. نتایج نشان داد ماهیان تغذیه شده با جیره حاوی سطح پودر جلبک اسپیرولینا 5 درصد از نظر بهبود شاخصهای رشد به لحاظ آماری اختلاف معنی داری با سایر تیمارها داشتند ولی از نظر کیفیت لاشه اختلاف معنی داری در تیمارها مشاهده نگردید و تنها در سطح 15 درصد سبب کاهش چربی لاشه گردد. براساس نتایج، در بین تیمارهای اسپیرولینا شاخص های ضریب رشد ویژه و طولی، ضریب چاقی، درصد افزایش وزن بدن و ضریب رشد روزانه در تیمار 5 درصد از سایر تیمارها بالاتر بود. در بین تیمارهای پودر گل میخک بهترین شاخصها در تیمار 4 درصد به دست آمد، هرچند در تیمار شاهد شاخص رشد و کیفیت لاشه در مقایسه با کلیه تیمارهای گل میخک بالاتر بود. براساس نتایج، استفاده از پودر جلبک در جیره غذایی بچه کپور ماهیان به میزان 5 درصد می تواند سبب بهبود عملکرد شاخص های رشد و کاهش ضایعات تغذیه ای خواهد گردد.
http://www.aejournal.ir/article_106753_86fcc8ce4469aba4f6c9e4d300ec890c.pdf
2020-06-21
189
194
10.22034/aej.2020.106753
اسپیرولینا
گل میخک
شاخص های رشد
کیفیت لاشه و کپور معمولی
داود
محمد رضائی
d.mrezaei@malayeru.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
LEAD_AUTHOR
ابراهیمی، ع.؛ تنگستانی، ر.؛ علیزاده دوغیکلایی، ا. و زارع، پ.، 1391. اثر سطوح مختلف اسانس سیر بر شاخص های رشد، تغذیه و ترکیب شیمیایی لاشه فیل ماهی (Husohuso) جوان پرورشی. مجله علوم و فنون دریایی. دوره 11، شماره 4، صفحات 1 تا 12.
1
اکبری، پ. و سندک زهی، ا.، 1395. اثر پودر جلبک اسپیرولینا (Spirulina platensis) روی رشد، تغذیه، ترکیب شیمیایی و اسیدهای چرب لاشه ماهی کفال خاکستری (Mugil cephalus). نشریه شیلات. دوره 69، شماره 1، صفحات 1 تا 9.
2
بیابانی اسرمی، م.؛ سوداگر، م.؛ مازندرانی، م. و یوسفی، س.، 1396. اثر پودر اسپیرولینا بر رشد، بازماندگی، کاروتنوئید کل ماهیان پیش مولد و پرورش در مرحله لاروی ماهی گورامی کوتوله (Trichogaster lalius). علوم و فنون شیلات. دوره 6، شماره 1، صفحات 21 تا 35.
3
رخشانی، م.؛ میردارهریجانی، ج. و قرائی، ا.، 1397. بررسی قدرت بی هوشی و آسیب های بافتی اسانس نعناع فلفلی (Mentha piperita) در ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله علمی شیلات ایران. دوره 27، شماره 1، صفحات 1 تا 10.
4
زرگری، ع.، 1376. گیاهان دارویی، جلد دوم. انتشارات دانشگاه تهران. 104 صفحه.
5
سلطانی، م.؛ غفاری، م.؛ خضرائی نیا، پ. و بکایی، س.، 1383. مطالعه اثرات بی هوشی اسانس گل میخک بر پارامترهای هماتولوژیک برخی آنزیم های خون و آسیب شناسی بافت های مختلف ماهی کپور معمولی. مجله دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران. دوره 59، شماره 3، صفحات 296 تا 299.
6
صابریان جویباری، م.؛ قبادی، ش. و وطن دوست، ص.، 1396. تأثیر سطوح مختلف پربیوتیک A-MAX بر شاخص های رشد، بازماندگی و ترکیبات لاشه در بچه ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). نشریه توسعه آبزی پروری. دوره 11، شماره 1، صفحات 77 تا 85.
7
عادل، م.؛ پورغلام، ر.؛ ذریه زهرا، ج.؛ صفری، ر. و قیاسی، م.، 1394. اثر سطوح مختلف عصاره نعناع فلفلی (Mentha piperita) بر شاخص های رشد، ترکیبات لاشه، باکتری های روده و بازماندگی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) در مواجهه با باکتری Yersinia ruckeri. مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 4، شماره 4، صفحات 62 تا 70.
8
علیشاهی، م.؛ سلطانی، م.؛ مصباح، م. وزرگر، ا.، 1391. اثرات تحریک ایمنی و رشد لوامیزول، ارگوسان و سه عصاره گیاهی در ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 67، شماره 3، صفحات 59 تا 67.
9
مهرابی، ی.، 1387. مطالعه مقدماتی اثر بی هوش کنندگی پودر گل میخک بر روی ماهی قزل آلای رنگین کمان. پژوهش و سازندگی. شماره 85، صفحات 41 تا 42.
10
Abdel-Tawwab, M.; Ahmad, M.H.; Abdel-Hadi, Y.M. and Seden, M.E.A., 2008. Use of spirulina (Arthrospir platensis) as a growth and immunity promoter for nile tilapia, Oreochromis niloticus (L.) fry challenged with pathogenic Aeromonas hydrophila. 8th International Symposium on Tilapia in Aquaculture. pp: 1015-1032.
11
Abdulrahman, N.M. and Ameen, H.J., 2014. Replacement of fishmeal with microalgae spirulina on common carp weight gain, meat and sensitive composition and survival. Pakistan Journal of Nutrition. Vol. 13, pp: 93-100.
12
AOAC. 1995. Official Methods of Analysis, Association of Official Analytical Chemists International. 4nd edition. Arlington, VA, USA. 634 p.
13
Capelli, B. and Cysewski, G.R., 2010. Potential health benefits of spirulina microalgae. Nutrafoods. Vol. 9, pp: 19-26.
14
Evaz-Zadeh Samani, H.; Banaee, M.; Shoukat, P.; Noori, A. and Mousavi Dehmoredi, L., 2017. Protective effects of dietary spirulina platensis against cadmium-induced oxidative stress in gills of rainbow trout. IJT. Vol. 11, pp: 5-12.
15
Güroy, B.; Sahin, I.; Mantoglu, S. and Kayali, S., 2012. Spirulina as a natural carotenoid source on growth, pigmentation and reproductive performance of yellow tail cichlid Pseudotropheus acei, Aquaculture International. Vol. 20, pp: 869- 878.
16
Hosseini, S.M.; Khosravi-Darani, K. and Mozafari, M.R., 2013. Nutritional and medical applications of spirulina microalgae. Mini Rev Med Chem. Vol. 13, pp: 1231-1237.
17
Hung, S.S.O.; Lutes, P.B. and Conte, F.S., 1987. Carcass proximate composition of juvenile white sturgeon (Acipenser transmontannus). Comparative Biochemistry and Physiology Part A. Vol. 1, pp: 269-272.
18
Ibrahim, F.; Quwehand, A.C. and Salminen, S.J., 2004. Effect of temperature on invitro adhesion of fish probiotics. Microbial ecology in health and disease. Vol. 16, pp: 222-227.
19
James, R.; Sampath, K.; Thangarathinam, R. and Vasudevan, I., 2006. Effect of dietary spirulina level on growth, fertility, coloration and leucocyte count in red swordtail, Xiphopho rushelleri. The Israeli Journal of Aquaculture-Bamidgeh. Vol. 58, pp: 97-104.
20
Mahboubi, M. and Haghi, G., 2008. Antimicrobial activity and chemical composition of Mentha pulegium L. essential oil. Ethnopharmacology.Vol. 19, pp: 325-327.
21
Mohammadrezaei, D.; Tayebi, L.; Sobhanardakani, S. and Cheraghi, M., 2011. Growth performance and food conversion ratio of Persian sturgeon (Acipenser persicus) at different level of dietary protein. 2nd International Conference on Environmental Science and Technology, IACSIT Press, Singapore. IPCBEE. Vol. 6, pp: 365-367.
22
Mustafa, M.G.; Umin, T.; Miyake, H. and Nakagawa, H., 1994. Effect of Spirulina Sp meal as feed additive on lipid accumulation in red sea bream. Suisansozoku. Vol. 42, pp: 363-369.
23
Nakagawa, H.; Kasahara, S. and Sugiyama, T., 1987. Effect of Ulva meal supplementation on lipid metabolism of black sea bream, Acanthopagrus schlegeli (Bleeker). Aquaculture. Vol. 62, pp: 109-121.
24
Nandeesha, M.C.; Gangadhara, B.; Manissery, J.K. and Venkataraman, L.V., 2001. Growth performance of two Indian major carps, catla (Catla catla) and rohu (Labeo rohita) fed diets containing different levels of Spirulina platensis. Bioresour. Technol. Vol. 80, pp: 117-120.
25
Promya, J. and Chitmanat, C., 2011. The effects of Spirulina platensis and cladophora algae on the growth performance, meat quality and immunity stimulating capacity of the African Sharp tooth Catfish (Clarias gariepinus). International Journal of Agriculture and Biology. Vol. 13, pp: 77-82.
26
Ramakrishnan, M.C.; Haniffa, M.; Manohar, M.; Dhanaraj, M.; Arockiaraj, A.J.; Seetharaman, S. and Arunsingh, S.V., 2008. Effects of Probiotics and Spirulina on Survival and Growth of Juvenile Common Carp (Cyprinus carpio). The Israeli Journal of Aquaculture Bamidgeh. Vol. 60, pp: 128-133.
27
Saroch, J.D.; Shrivastav, R.; Manohar, S. and Quereshi, T.A., 2012. Effect of Spirulina impregnated feed on the fingerlings of Catla (Catla catla). Journal of Chemical, Biological and Physical Sciences. Vol. 27, pp: 55-67.
28
Shalaby, A.M.; Khattab, Y.M. and Abdel rahman, A.M., 2006. Effects of garlic (Allium sativum) and chloramphenicol on growth performance, physiological parameters and survival of Nile Tilapia (Oreochromis niloticus). Journal of Venomous Animals and Toxins Including Tropical Diseases. Vol. 12, pp: 172-201.
29
Subramanian, A. and Balasubramanian, U., 2014. Effect of spirulina on growth and biochemical performance in common carp Catla catla and Labeo rohita (Fingerlings). International Journal of Research in Fisheries and Aquaculture. Vol. 4, pp: 140-144.
30
Teimouri, M.; Amirkolaie, A.K. and Yeganeh, S., 2013. The effects of Spirulina platensis meal as a feed supplement on growth performance and pigmentation of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 396, pp: 14-19.
31
Tokur, S.; Ozkütük, E.; Atici, G.; Ozyurt, C.E. and Ozyur, E., 2006. The effects of frozen storage at −18°C on the chemical and sensory qualities of fish fingers produced from unwashed and washed mirror carp (Cyprinus carpio) mince were investigated. The amounts of moisture, crude protein, lipid, crude ash, ω3 polyunsaturated. Food Chemistry. Vol. 151, pp: 55-70.
32
Tongsiri, K.A. and Yuwadee, P., 2010. Effect of Replacing Fishmeal with Spirulina on Growth, Carcass Composition and pigment of the Mekong Giant Catfish. Asian Journal of Agricultural Sciences. Vol. 2, pp: 106-110.
33
Velíšek, J.; Svobodová, Z. and Piačková, V., 2005b. Effects of clove oil anesthesia on Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Acta Veterinaria Brno. Vol. 74, pp: 139-146.
34
Velíšek, J.; Svobodová, Z.; Piačková, v.; Groch, L. and Nepejchalova, L., 2005a. Effects of clove oil anesthesia on common carp (Cyprinus carpio L.). Veterinaria Medicine. Vol. 50, pp: 269-275.
35
Volkman, H.; Imianovsky, U.; Oliveira, J.L.B. and Santanna, E.S., 2008. Cultivation of arthrospira (Spirulina platensis) in desalinator wastewater and salinated synthetic medium: protein content and amino-acid profile. Braz. J. Microbiol. Vol. 39, pp: 98-101.
36
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات سطوح مختلف سدیم آلژینات با وزن مولکولی پایین بر عملکرد رشد و شاخص های ایمنی موکوس در ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio)
هدف از این مطالعه بررسی اثرات به کارگیری سطوح مختلف سدیم آلژینات با وزن مولکولی پایین در جیره غذایی ماهی کپور بر عملکرد رشد و شاخص های ایمنی موکوس در بچه ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) بود. بدین منظور تعداد 240 قطعه بچه ماهی کپور با میانگین وزنی حدود 0/40±19/12 گرم تهیه و در 12 مخزن 200 لیتری (4 تیمار و هر تیمار در 3 تکرار) ذخیره سازی شدند. در انتهای دوره آزمایش شاخص های رشد، پروتئین کل موکوس، ایمونوگلوبولین کل موکوس و لیزوزیم موکوس اندازه گیری شدند. نتایج نشان داد که در شاخص های رشد، ایمونوگلوبولین کل موکوس و لیزوزیم موکوس بین تیمارهای تغذیه شده با سدیم آلژینات با وزن مولکولی پایین و گروه شاهد تفاوت معنی داری وجود ندارد (0/05<P). ولی افزایش معنی دار پروتئین کل موکوس در همه تیمارهای حاوی سدیم آلژینات نسبت به گروه شاهد مشاهده شد (0/05>P) و بیش ترین میزان پروتئین کل موکوس در تیمار 1% سدیم آلژینات مشاهده شد (0/05>P). به طورکلی نتایج این تحیقیق حاکی از آن است که جیره حاوی سدیم آلژینات با وزن مولکولی پایین با افزایش معنی دار میزان پروتئین کل موکوس باعث تحریک و افزایش ایمنی در ماهی کپورمعمولی می شود.
http://www.aejournal.ir/article_106861_1f1d6b095c8d9886a96f1768fec8da1b.pdf
2020-06-21
195
202
10.22034/aej.2020.106861
آلژینات سدیم
وزن مولکولی پایین
عملکرد رشد
شاخص های ایمنی موکوس
ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio)
منیره
سهلی
moniresahli@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
حامد
پاک نژاد
hkolangi@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سید حسین
حسینی فر
hossein.hoseinifar@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
محمد
سوداگر
sudagar.2015@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
محمد
مازندرانی
mazandarani75@gmail.com
5
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
حبیب اله
سنچولی
habibsanchooli@yahoo.com
6
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
اکرمی، ر.؛ کریم آبادی، ع.؛ محمدزاده، ح. و احمدی فر، ا.، 1388. تاثیر پربیوتیک مانان الیگوساکارید بر رشد، بازماندگی، ترکیب بدن و مقاومت به تنش شوری در بچه ماهی سفید (Rutilus kutum). مجله علوم و فنون دریایی. دوره 8، شماره 3-4، صفحات 47 تا 57.
1
سپهرفر، د.؛ سروی مغانلو، ک.؛ حسینی فر، س.؛ پاک نژاد، ح. و جافرنوده، ع.، 1397. تاثیر استفاده مجزا و تلفیقی پروبیوتیک Pediococcus acidilactici و پودر Agaricus bisporus بر شاخص های ایمنی موکوس و هیستومورفولوژی روده در بچه ماهیان کپور معمولی (Cyprinus carpio). فصلنامه فیزیولوژی و تکوین جانوری. شماره 41، جلد 11، صفحات 27 تا 36.
2
شکوری، م.، 1396. اثرات به کارگیری لیزوزیم خوراکی در جیره غذایی بر شاخص های رشد، برخی فاکتورهای ایمنی غیراختصاصی و بیان ژن های ایمنی در ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 78 صفحه.
3
کریمی، م.، 1396. بررسی اثرات سطوح مختلف پربیوتیک رافینوز بر عملکرد رشد، شاخص های ایمنی سرم و موکوس و الگوی پروتئینی موکوس در بچه ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 68 صفحه.
4
Ai, Q.; Mai, K.; Tan, B.; Xu, W.; Duan, Q.; Ma, H. and Zhang, L., 2006. Replacement of fish meal by meat and bone meal in diets for large yellow croaker, Pseudosciaena crocea. Aquaculture. Vol. 260, pp: 255-263.
5
Akrami, R.; Iri, Y.; Khoshbavar Rostami, H.A. and Razeghi Mansour, M., 2013. Effect of dietary supplementation of fructooligosaccharide (FOS) on growth performance, survival, lactobacillus bacterial population and hemato-immunological parameters of stellate sturgeon (Acipenser stellatus) juvenile. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 35, pp: 1235-1239.
6
Ayala, M.D.; Lopez-Albors, O.; Garcia-Alcazar, A.; Arizcun, M. and Abdel, I., 2012. Effect of Sodium Alginate Dietary in Body Parameters and Muscle Growth of Gilthead Sea Bream, Sparus aurata L. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 12, No. 3, pp: 627-633.
7
Bairwa, M.K.; Jakhar, J.K.; Satyanarayana, Y. and Reddy, A.D., 2012. Animal and plant originated immunostimulants used in aquaculture. Journal of Natural Products and Plant Resources. Vol. 2, No. 3, pp: 397-400.
8
Bekcan, S.; Dogankaya, L. and Cakirogullari, G.C., 2006. Growth and body composition of European catfish (Silurus glanis L.) fed diets containing different percentages of protein. The Israel Journal of Aquaculture- Bamidgeh. Vol. 58, No. 2, pp: 137-142.
9
Bohlouli, S. and Sadeghi, E., 2016. Growth performance and haematological and immunological indices of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fingerlings supplemented with dietary Ferulago angulata (Schlecht) Boiss. Acta Veterinaria Brno. Vol. 85, No. 3, pp: 231-238.
10
Cho, J.H.; Park, I.Y.; Kim, H.S.; Lee, W.T.; Kim, M.S. and Kim, S.C., 2002. Cathepsin D produces antimicrobial peptide I from histone H2A in the skin mucosa of fish. J. FASEB. Vol. 16, pp: 429-431.
11
Cone, R.A., 2009. Barrier properties of mucus. Advanced Drug Delivery reviews. Vol. 61, pp: 75-85.
12
Doan, H.V.; Hoseinifar, S.H.; Tapingkae, W.; Tongsiri, S. and Khamtavee, P., 2016. Combined administration of low molecular weight sodium alginate boosted immunomodulatory, disease resistance and growth enhancing effects of Lactobacillus plantarum in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Fish and shellfish Immunology. Vol. 58, pp: 678-685.
13
Doan, H.V.; Hoseinifar, S.H.; Tapingkae, W. and Khamtavee, P., 2017. The effects of dietary kefir and low molecular weight sodium alginate on serum immune parameters, resistance against Streptococcus agalactiae and growth performance in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Fish and shellfish Immunology. 38 p.
14
Doan, H.V.; Tapingkae, W.; Moonmanee, T. and Seepai, A., 2016. Effects of low molecular weight sodium alginate on growth performance, immunity, and disease resistance of tilapia, Oreochromis niloticus. Fish and shellfish Immunology. 39 p.
15
FAO. 2014. Aquaculture Department 2014. The state of world fisheries and aquaculture 2014. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome. 243 p.
16
Hajibeglou, A. and Sudagar, M., 2011. Effect of Dietary Probiotic Level on the Reproductive Performance of Female Platy (Xiphophorus maculatus). Agricultural Journal. Vol. 6, pp: 119-123.
17
Hevroy, E.; Espe, M.; Waagbo, R.; Sandnes, K.; Ruud, M. and HEMRE, G.I., 2005. Nutrient utilization in Atlantic salmon (Salmo salar L.) fed increased levels of fish protein hydrolysate during a period of fast growth. Aquaculture Nutrition. Vol. 11, pp: 301-313.
18
Jeney, G. and Anderson, D.P., 1993. Glucan injection or bath exposures given alone or in combination with bacterin enhance the non-specific defense mechanisms in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 116, No. 4, pp: 315-329.
19
Kolangi Miandare, H.; Farvardin, Sh.; Shabani, A.; Hoseinifar, S.H. and Ramezanpour, S., 2016. The effects of galactooligosacharide on systemic and mucosal immune response, growth performance and appetite related gene transcript in goldfish (Carassius auratus gibelio). Fish & Shellfish immunology. Vol. 55, pp: 479-483.
20
Kruger, N.J., 1994. The Bradford method for protein quantitation. Basic Protein and Peptide Protocols. pp: 9-15.
21
Lowry, O.H.; Rosebrough, N.J.; Farr, A.L. and Randall, R.J., 1951. Protein measurement with the folin phenol reagent. The Journal of Biological Chemistry. Vol. 193, pp: 265-275.
22
Mahious, A.S. and Ollevier, F., 2005. Probiotics and Prebiotics in Aquaculture: A Review. 1st Regional Workshop on Techniques for Enrichment of Live Food for Use in Larviculture. Artemia and aquatic Animals Research Institute. pp: 17-26.
23
Mahdavi, M.; Hajimoradloo, A. and Ghorbani, R., 2013. Effect of Aloe vera extract on growth parameters of common carp (Cyprinus carpio). World Journal of Medical Sciences. Vol. 9, No. 1, pp: 55-60.
24
Nakamura, O.; Tazumi, Y.; Muro, T.; Yasuhara, Y. and Watanabe, T., 2004. Active uptake and trans-port of protein by the intestinal epithelial cells in embryo of viviparous fish, Neoditrema ransonneti (Perciformes: Embiotocidae). J. Exp. Zool. Vol. 301A, pp: 38-48.
25
Ottesen, O.H. and Olafsen, J.A., 1997. Ontogenetic development and composition of the mucous cells and the occurrence of saccular cells in the epidermis of Atlantic halibut. J. Fish Biol. Vol. 50, pp: 620-633.
26
Reilly, A. and Keferstein, F., 1997. Food safety hazards and the application of the principles of the hazard analysis and critical control point (HACCP) for their control in Aquaculture production. Aquaculture Research. Vol. 28, No. 10, pp: 735-752.
27
Schley, P.D. and Field, C.J., 2002. The immune-enhancing effects of dietary fibres and prebiotics. Br. J. Nut. Vol. 87, pp: 221-230.
28
Sharifian, M.; Hajimoradloo, A.; Ghorbani, R. and Hoseinifar, S.H., 2017. Effects of Dietary Retinol Acetate on Growth Performance, Skin Mucus Immune Responses and Haematological Parameters of Caspian Roach (Rutilus caspicus). Aquaculture Nutrition. Vol. 23, No. 5, pp: 893-898.
29
Siwicki, A.K. and Anderson, D.P., 1993. Nonspecific defense mechanisms assay in fish: II. Potential killing activity of neutrophils and macrophages, lysozyme activity in serum and organs and total immunoglobulin level in serum. Fish Disease Diagnosis and Prevention Methods Olsztyn, Poland. pp: 105-112.
30
Soleimani, N.; Hoseinifar, S.H.; Merrifield, D.L.; Barati, M. and Abadi, Z.H., 2013. Dietary supplementation of fructooligosaccharide (FOS) improves the innate immune response, stress resistance, digestive enzyme activities and growth performance of Caspian roach (Rutilus rutilus) fry. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 32, pp: 316-321.
31
Subramanian, S.; MacKinnon, Sh.L. and Ross, N.W., 2007. A comparative study on innate immune parameters in the epidermal mucus of various fish species. Comprative Biochemistry and Physiology, part B. Vol. 148, pp: 256-263.
32
Subramanian, S.; Ross, N.W. and MacKinnon, S.L., 2008. Comparison of antimicrobial activity in the epidermal mucus extracts of fish. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 150, pp: 85-92.
33
Syahidah, A.; Saad, C.R.; Daud, H.M. and Abdelhadi, Y.M., 2015. Status and potential of herbal applications in aquaculture: A review. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 14, No. 1, pp: 27-44.
34
Tacon, A., 1990. Standards methods for the nutrition and feeding of farmel fish and shrimp. 208 p.
35
ORIGINAL_ARTICLE
اثرعصاره جلبک پادینا (Padina astraulis Hauck) برشاخص رشد ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio)
نحقیق حاضر به منظور بررسی اثرجلبک پادینا (Padina astraulis Hauck) برشاخص های رشد ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) انجام گرفت. بر این اساس تعداد 250 قطعه بچه ماهی کپور معمولی با میانگین وزنی 20 گرم در چهار تیمار و هر تیمار با سه تکرار شامل: غذای بدون جلبک (تیمار شاهد)، غذای دارای جلبک به میزان 0/5 درصد (تیمار 1)، غذای دارای جلبک به میزان 1 درصد (تیمار 2) و غذای دارای جلبک به میزان 2 درصد (تیمار 3) توزیع و به مدت 42 روز تغذیه شدند. زیست سنجی ماهیان به منظور بررسی شاخص های رشد در ابتدا، میانه و آخر دوره آزمایش انجام گردید. نتایج تجزیه و تحلیل داده های در انتهای دوره نشان داد بیش ترین میزان درصد افزایش وزن، نرخ رشد ویژه در تیمار 2 و کم ترین آن در گروه شاهد مشاهده شد ولی بین تیمارها اختلاف معنی داری وجود نداشت (0/05<P). هم چنین بیش ترین میزان ضریب تبدیل غذایی در گروه شاهد و کم ترین آن در تیمار 2 ولی بین تیمارها اختلاف معنی دار وجود نداشت (0/05<P). با توجه به نتایج به نظر می رسد استفاده از جلبک پادینا با غلظت های استفاده شده در این پژوهش باعث بهبود شاخص رشد گردید هر چند که این بهبودی درحد اختلاف معنی داری نبوده است.
http://www.aejournal.ir/article_106874_a440f33ea0060cfc795ded089f224616.pdf
2020-06-21
203
208
10.22034/aej.2020.106874
شاخص های رشد
کپورمعمولی
جلبک
مکمل غذایی
آنیتا
گل پور
anita.golpour@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
سید عباس
حسینی
seyedabbas_hosseini@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سید علی اکبر
هدایتی
hedayati@gau.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
علی
جافرنوده
a.jafar55@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
مهتاب
خلجی
mahtabkhalaji24@gmail.com
5
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
اکبری، پ. و شهرکی، ن.، 1395. اثر عصاره جلبک پادینا (Padina astraulis Hauck) بر روی رشد، تغذیه، مشخصات اسیدهای چرب و ترکیب شیمیایی لاشه ماهی کفال خاکستری (Mugil cephalus Linnaeus,1758). مجله علمی شیلات ایران. جلد 25، شماره 2، صفحات 161 تا 170.
1
بیرانوند، م.؛ قائنی، م. و ولایت زاده، م.، 1394. تأثیر مکمل جلبک اسپیرولینا (.Spirulina sp) بر رشد و تغذیه ماهی زبرا دانیو (Danio rerio Hamilton, 1822). یافته های نوین در علوم زیستی (نشریه علوم). جلد 2، شماره3، صفحات 207 تا 215.
2
شیخ ویسی، ر.؛ هدایتی، ع.؛ باقری، ط. و جافر نوده، ع.، 1396. بررسی شاخص های خون شناسی ماهی کپور معمولی در مواجهه با نانوذرات آهن و پروبیوتیک لاکتوباسیلوس. فصلنامه محیط زیست جانوری جلد 9، شماره 4، صفحات 215 تا 222.
3
طهماسبی، د.، 1393. بررسی تغذیه با جیره حاوی ویتامین E (آلفا توکوفرول استات) و نانو ذرات سلنیوم بر شاخصهای رشد، بقا، ترکیب لاشه، و میزان آنزیم گلوتاتیون پروکسیداز و مالون دی آلدهید کل بدن در ماهی سفید (Rutilus frisii kutum). پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 56 صفحه.
4
Ashouri, S.; Keyvanshokooh, S.; Salati, A. P.; Johari, S. A. and Pasha-Zanoosi, H., 2015. Effects of different levels of dietary selenium nanoparticles on growth performance, muscle composition, blood biochemical profiles and antioxidant status of common carp (Cyprinus carpio). Aquaculture. Vol. 446, pp: 25-29.
5
Bagenal, T., 1978. Methods for assessment of fish production in fresh waters. Blackwell Science Inc. 384 P.
6
Balcazar, J.L.; de Blas, I.; Ruiz-Zarzuela, I.; Cunningham, D.; Vendrell, D. and Mu´zquiz, J.L., 2006. The role of probiotics in aquaculture. Vet. Microbiol. Vol. 114, pp: 173-186.
7
Balcazar, J.L.; de Blas, I.; Ruiz-Zarzuela, I.; Vendrell, D.; Girones, O. and Muzquiz, J.L., 2007. Enhancementof the immuneresponse and protection induced by probiotic lactic acid bacteria against furunculosis in rainbowtrout (Oncorhynchus mykiss). FEMS Immunol. Med. Microbiol. Vol. 51, pp: 185-193.
8
Berreto, M.S.R.; Menten, J.F.M.; Racanicii, A.M.C.; Pereira, P.W.Z. and Rizzo, P.V., 2008. Plant extracts used as growth promoters in broilers. Brazilian Journal Poultry Science. Vol. 10, pp: 109-115.
9
Choi, Y.H.; Kim, K.W.; Han, H.S.; Nam, T.J. and Lee, B.J., 2014. Dietary Hizikia fusiformis glycoprotein-induced IGF-I and IGFBP-3 associated to somatic growth, polyunsaturated fatty acid metabolism, and immunity in juvenile olive flounder Paralichthys olivaceus. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 167, pp: 1-6.
10
Fleurence, J.; Moranais, M.; Dumay, J.; Decottingnies, P.; Turpin, V.; Munier, M.; GarciaBueno N. and Jaouen, P., 2012. What are the prospects for using seaweed in human nutrition and for marine animals raised through aquaculture? Trends Food Science and Technology. Vol. 27, pp: 57-61.
11
Gómez-Ordóñez, E.; Jiménez-Escrig, A. and Rupérez, P., 2010. Dietary fibre and physicochemical properties of several edible seaweeds from the northwestern Spanish coast. Food Research International. Vol. 43, No. 9, pp: 2289-2294.
12
Hertrampf, J.W., 2001. Alternative antibacterial performance promoters. Poultry International. Vol. 40, pp: 50-52.
13
Kirjavainen, P.V.; El-Nezami, H.S.; Salminen, S.J.; Ahokas, J.T. and Wright,F.A., 1999. The effect of orally administered viable probiotic and dairy lactobacilli on mouse lymphocyte proliferation. FEMS Immunology and Medical Microbiology. Vol. 26, pp: 131-135.
14
Lavens, P. and Sorgelos, P., 1996. Manual on the production and use of live food for aquaculture. FAO, Fisheris technical paper. Vol. 361, pp: 283-295.
15
Meshkini,S.; Tafy,A.A.;Tukmechi, A. andFarhang Pajuh, F., 2012. Effects of chitosan on hematological parameters and stress resistance in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Veterinary Research Forum. Vol. 3, No. 1, pp: 49-55.
16
Metz, J.; Van den Burg, E.H.; Wendelaar Bonga, S.E. and Flik, G., 2003. Regulation of branchial Na+/K+- TPase in common carp (Cyprinus carpio) acclimated to different temperatures. The Journal of Experimental Biology. Vol. 206, pp: 2273-2280.
17
Mustafa, M.G.; Wakamatsu, S.; Takeda, T.A.; Umino, T. and Nakagawa, H., 1995. Effects of algae meal as feed additive on growth, feed efficiency, and body composition in red sea bream. Fisheries Science. Vol. 61, pp: 25-28.
18
NRC (National research council). 1993. nutrient requirement of fish. National Academy press, Washington, DC. 114 p.
19
Peng, Y.; Xie, E., Zheng, K.; Fredimoses, M.; Yang, X.; Zhou, X.; Wang, Y.; Yang, B.; Lin, X.; Liu, J. and Liu, Y., 2013. Nutritional and chemical composition and antiviral activity of cultivated seaweed Sargassum naozhouense Tseng et Lu. Marine drugs. Vol. 11, No. 1, pp: 20-32.
20
Rupérez, P., 2002. Mineral content of edible marine seaweeds. Food chemistry. Vol. 79, No. 1, pp: 23-26.
21
Sethi, P., 2012. Biochemical composition of marine brown algae Padina tetrastromatica Hauck. International Journal of Current Pharmaceutical Research. Vol. 4, No. 1, pp: 117-118.
22
Stadtlander, T.; Khalil, W.K.B.; Focken, U. and Becker, K., 2013. Effects of low and medium levels of red alga nori (Porphyra yezoensis Ueda) in the diets on growth, feed utilization and metabolism in intensively fed Nile tilapia, Oreochromis niliticus (L.). Aquaculture Nutrition. Vol. 19, pp: 64-73.
23
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر توام تراکم و استراتژی های مختلف تغذیه ای بر عملکرد رشد و شاخص های هماتولوژیک ماهی کوی (Cyprinus carpio var. Koi)
در تحقیق حاضر اثر استراتژی های مختلف تغذیه ای در تراکم های مختلف ذخیره سازی بر رشد و پارامترهای هماتولوژیک ماهی کوی (Cyprinus carpio var. Koi) با میانگین وزن 0/27±3/44 گرم و به مدت 45 روز مورد بررسی قرار گرفت. برای این منظور ماهی ها در 6 تیمار آزمایشی در 3 تکرار شامل، تراکم بالا (20 عدد ماهی در مخزن) و تغذیه در حد سیری (20 C)، تراکم پایین (10 عدد ماهی در مخزن) و تغذیه در حد سیری (10 C)، تراکم بالا و تغذیه در حد 50% سیری (20 R)، تراکم پایین و تغذیه در حد 50% سیری (10 R)، تراکم بالا و گرسنگی (20 S)، تراکم پایین و گرسنگی (10 S) درنظر گرفته شد. زیست سنجی ماهیان و اندازه گیری شاخص های رشد و تغذیه هر 15 روز یک بار انجام گرفت. در پایان دوره آزمایش خونگیری از ماهیان جهت اندازه گیری پارامترهای خونی به عمل آمد. نتایج نشان داد در پارامترهای رشد ماهی کوی با اعمال توام استراتژی تغذیه ای در تراکم مختلف اثر معنی داری بر فاکتورهای وزن کسب شده و فاکتور وضعیت ماهیان مشاهده شد (0/05>P). پارامترهای رشد در تیمارهای 20 C و 10 C نسبت به سایر تیمارها بالاتر بود. هم چنین با بررسی نتایج آنالیز خون ماهیان اعمال استراتژی تغذیه ای در تراکم مختلف تفاوت معنی داری در تعداد گلبول های سفید، درصد لنفوسیت و نوتروفیل ماهیان مشاهده شد (0/05>P). نتایج پژوهش کنونی نشان داد که تغذیه در حد سیری در تراکم بالا و پایین تاثیر مثبتی بر روی عملکرد رشد و پارامترهای هماتولوژیک ماهیان کوی دارد.
http://www.aejournal.ir/article_105734_3151b99a787f2aae775e5b6682cca779.pdf
2020-06-21
209
220
10.22034/aej.2020.105734
کپور ماهیان
تراکم
تغذیه
گرسنگی
رضا
عباسی مصردشتی
rezaabbasimesrdashti94@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
میر مسعود
سجادی
mmsajjadi@hotmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
LEAD_AUTHOR
بهرام
فلاحتکار
falahatkar@guilan.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
ایمان پور، م.؛ احمدی، ا. و کردجزی، م.، 1388. اثر تراکم های مختلف ذخیره سازی روی بازماندگی و شاخص های رشد ماهی کپور پرورشی (Cyprinus carpio). مجله علمی شیلات ایران. شماره 18، صفحات 1 تا 10.
1
ایمانی، آ.؛ فرهنگی، م.؛ یزدان پرست، ر.؛ بختیاری، م.؛ شکوه سلجوقی، ظ. و مجازی امیری، ب.، 1388. شاخص های تغذیه و رشد در قزل آلای رنگین کمان Oncorhynchus mykiss طی دوره های مختلف محرومیت غذایی و غذادهی مجدد. مجله علمی شیلات ایران. شماره 8، صفحات 1 تا 12.
2
بهره مند، م. و سلیمانی راد، آ.، 1396. تأثیر تراکم ذخیره سازی بر عملکرد رشد، ایمنی و استرس در ماهی کوی (Cyprinus carpio var. Koi). مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 6، شماره 4، صفحات 10 تا 20.
3
بهره مند، م.؛ کامرانی، ا.، رشیدیان، ق. و سلیمانی راد، آ.، 1395. تأثیر جیره حاوی پریبیوتیک ایمونوژن بر تغذیه، رشد جبرانی و برخی پارامترهای خونی ماهی کوی (Cyprinus carpio var. Koi)، پس از دوره های گرسنگی. مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 6، شماره 2، صفحات 23 تا 32.
4
جعفریان، ح.، 1387. توسعه آبزی پروری پایدار با استفاده از پروبیوتیک ها در ایران. شیلات. دوره 2، صفحات 47 تا 56.
5
حاجی مرادی، م.؛ محبوبی صوفیانی، ن. و علامه، س.ک.، 1386. اثر گرسنگی بر سطح کلسترول، گلوکز و پروتئین پلاسمای خون قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله علوم و فنون دریایی ایران. دوره 6، صفحات 23 تا 30.
6
خارا، ح.؛ افشار، ع.م. و فلاحتکار، ب.، 1393. اثرات گرسنگی و استراتژی های تغذیه ای بر عملکرد رشد و ترکیب لاشه تاس ماهی روسی (Acipenser gueldenstaedtii). مجله آبزیان و شیلات. دوره 17، شماره 5، صفحات 1 تا 11.
7
شیروان، س.؛ فلاحتکار، ب.؛ علاف نویریان، ح. و عباسعلی زاده، ع.، 1392. تأثیر اعمال دوره طولانی مدت گرسنگی و محدودیت غذایی بر عملکرد رشد و ترکیب بدن در بچه تاس ماهی سیبری (Acipenser baerii). مجله علمی شیلات ایران. دوره 22، صفحات 91 تا 102.
8
زارع، ر.؛ بهمنی، م.؛ یاوری، و.؛ کاظمی، ر.؛ فاضلی، ن.؛ پوردهقانی، م. و محمدیان، ت.، 1391. اثرات تراکم پرورش بر گلبول های سفید و سطوح کورتیزول پلاسمای خون تاس ماهی سیبری (Acipenser baerii). مجله دامپزشکی ایران. دوره 8، شماره 2، صفحات 22 تا 32.
9
عبادزاده، ح.ر.؛ احمدی، ک.؛ محمدنیاافروزی، ش.؛ طاقانی، ر.ع.؛ مرادی اسلامی، ا.؛ عباسی، م. و یاری، ش.، 1394. آمارنامه کشاورزی. وزارت جهادکشاورزی، معاونت برنامه ریزی و اقتصادی، مرکز فناوری اطلاعات و ارتباطات. تهران. 379 صفحه.
10
محبوبی صوفیانی، ن.؛ حاجی مرادی، م.؛ علامه، س.ک. و پیله وریان، ع.ا.، 1389. اثر گرسنگی بر پارهای از ویژگی های مورفولوژیکی و هماتولوژیکی ماهی قزل آلای رنگین کمان Oncorhynchus mykiss. مجله زیست شناسی ایران. دوره 23، صفحات 234 تا 248.
11
مرشدی، و.؛ عشوری، ق.؛ کوچنین، پ.؛ یاوری، و.؛ بهمنی، م.؛ پوردهقانی، م.؛ یزدانی، م.؛ پورعلی، ح. و عضدی، م.، 1390. تأثیر دوره های گرسنگی کوتاه مدت بر روی فاکتورهای خونی فیل ماهیان (Huso huso) پرورشی. مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 66، صفحات 262 تا 269.
12
Abdel-Tawwab, M.; Khattab, Y.A.; Ahmad, M.H. and Shalaby, A.M., 2006. Compensatory growth, feed utilization, whole-body composition, and hematological changes in starved juvenile Nile tilapia, Oreochromis niloticus (L.). Journal of Applied Aquaculture. Vol. 18, pp: 17-36.
13
Akbary, P. and Jahanbakhshi, A., 2016. Effect of starvation on growth, biochemical, hematological and non-specific immune parameters in two different size groups of grey mullet, Mugil cephalus (Linnaeus, 1758). Acta Ecologica Sinica. Vol. 36, pp: 205-211.
14
Andrade, T.; Afonso, A.; Perez-Jimenez, A.; Oliva-Teles, A.; de Las Heras, V.; Mancera, J.M.; Serradeiro, R. and Costas, B., 2015. Evaluation of different stocking densities in a Senegalese sole(Solea senegalensis) farm: Implications for growth, humoral immune parameters and oxidativestatus. Aquaculture. Vol. 438, pp: 6-11.
15
Atamanalp, M. and Yanik, T., 2003. Alterations in hematological parameters of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) exposed to mancozeb. Turkish Journal of Veterinary and Animal Sciences. Vol. 27, pp: 1213-1217.
16
Backiel, T. and Le Cren, E.D., 1978. Some density relationship for fish population parameters. In: The Ecology of Freshwater Fish Production (Ed. S.D. Gerking). Blackwell Scientific Publications, Oxford. pp: 279-302.
17
Balabanova, L.V.; Mikryakov, D.V. and Mikryakov, V.R., 2009. Response of common carp (Cyprinus carpio L.) leucocytes to hormone induced stress. Inland Water Biology. Vol. 2, No. 1, pp: 86-88.
18
Barcellos, L.J.G.; Marqueze, A.; Trapp, M.; Quevedo, R.M. and Ferreira, D., 2010. The effects of fasting on cortisol, blood glucose and liver and muscle glycogen in adult Jundiá Rhamdia quelen. Aquaculture. Vol. 30, pp: 231-236.
19
Begum, M.; Mamun, A.; Pal, H.K., Islam, M.A. and Alam, M.J., 2008. Effects of stocking density on growth and survival of Mystus gulio in nursery ponds. Bangladesh Journal of Fisheries Research. Vol. 12, No. 2, pp: 179-186.
20
Benfey, T.J. and Biron, M., 2000. Acute stress response in triploid rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and brook trout (Salvelins fontinalis). Aquaculture. Vol. 184, pp: 167-176.
21
Bilen, S.; Bilen, A.M. and Önal, U., 2015. The effects of oxygen supplementation on growth and survival of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) in different stocking densities. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 14, No. 3, pp: 538-545.
22
Biswas, J.K.; Sarkar, D.; Chakraborty, P.; Bhakta, J.N. and Jana, B.B., 2006. Density dependent ambient ammonium as the key factor for optimization of stocking density of common carp in small holding tanks. Aquaculture. Vol. 261, pp: 952-959.
23
Bjornsson, B., 1994. Effects of stocking density on growth rate of halibut (Hippoglossus hippoglossus L.) reared in large circular tanks for three years. Aquaculture. Vol. 123, pp: 259-270.
24
Black, D. and Love, R.M., 1986. The sequential mobilisation and restoration of energy reserves in tissues of Atlantic cod during starvation and refeeding. Journal of Comparative Physiology B: Biochemical, Systemic, and Environmental Physiology. Vol. 156, pp: 469-479.
25
Blaxhall, P.C. nad Daisley, K.W., 1973. Routine haematological methods for use with fish blood. Journal of Fish Biology. Vol. 5, pp: 771-781.
26
Boscolo, C.; Morais, R. and Gonçalves-de-Freitas, E., 2011. Same-sized fish groups increase aggressive interaction of sexreversed males Nile tilapia GIFT strain. Applied Animal Behavior Science. Vol. 135, pp: 154-159.
27
Brett, J.R., 1979. Environmental factors and growth. In Fish Physiology, Vol. VIII, pp: 599-675. Ed. by Hoar, W.S.; Randall D.J. and Brett, J.R. Academic Press, New York. 786 p.
28
Braun, N.; Dafre, A.; Lima, R.; Beux, L.; Brol, F. and Nuer, A., 2013. Growth and stress of dourado cultivated in cages at differentstocking densities. Pesq. Agropec. Bras. Brasilia. Vol. 48, No. 8, pp:1145-1149.
29
Caruso, G.; Denaro, M.G.; Caruso, R.; Genovese, L.; Mancari, F. and Maricchiolo, G., 2012. Short fasting and refeeding in red porgy (Pagrus pagrus, Linnaeus 1758): Response of some haematological, biochemical and nonspecific immune parameters. Marine Environmental Research. Vol. 81, pp: 18-25.
30
Caruso, G.; Denaro, M.G.; Caruso, R.; Mancari, F.; Genovese, L. and Maricchiolo, G., 2011. Response to short term starvation of growth, haematological, biochemical and non-specific immune parameters in European sea bass (Dicentrarchus labrax) and blackspot sea bream (Pagellus bogaraveo). Marine Environmental Research. Vol. 72, pp: 46-52.
31
Caruso, G.; Maricchiolo, G.; Micale, V.; Genovese, L.; Caruso, R. and Denaro, M.G., 2010. Physiological responses to starvation in the European eel (Anguilla anguilla): effects on haematological, biochemical, non specific immune parameters and skin structures. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 36, pp: 71-83.
32
Chakraborty, B.K. and Mirza, M.J.A., 2007. Effect of stocking density on survival and growth of endangered bata, Labeo bata (Hamilton-Buchanan) in nursery ponds. Aquaculture. Vol. 265, pp: 156-162.
33
Chakraborty, B.K.; Miah, M.I.; Mirza, M.J.A. and Habib, M.A.B., 2006. Rearing and nursing of endangered sarpunti, Puntius sarana (Ham.) with tree supplementary feeds. Journal of The Asiatic Society of Bangladesh. Science. Vol. 32, No. 1, pp: 33-41.
34
Chatzifotis, S.; Papadaki, M.; Despoti, S.; Roufidou, C. and Antonopoulou, E., 2011. Effect of starvation and re-feeding on reproductive indices, body weight, plasma metabolites and oxidative enzymes of sea bass (Dicentrarchus labrax). Aquaculture.Vol. 316, pp: 53-59.
35
Cho, S.H.; Lee, S.M.; Park, B.H.; Ji, S.C.; Lee, J.; Bae, J. and Oh, S.Y., 2006. Compensatory growth of juvenile olive flounder, Paralichthys olivaceus L., and changes in proximate composition and body condition indexes during fasting and after refeeding in summer season. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 37, pp: 168-174.
36
Duncan, P.L.; Lovell, R.T.; Butterworth, J.C.E.; Freeberg, L.E. and Tamura, T., 1993. Dietary folate requirement determined for channel catfish, Ictalurus punctatus. Journal of Nutrition. Vol. 123, pp: 1888-1897.
37
Ellis, T.; North, B.; Scott, A.P.; Bromage, N.R.; Porter, M. and Gadd, D., 2002. The relationships between stocking density and welfare in farmed rainbow trout. Journal of Fish Biology. Vol. 61, pp: 493-531.
38
Falahatkar, B.; Akhavan, S.; Efatpanah, I. and Meknatkhah, B., 2013. Effect of winter feeding and starvation on the growth performance of young‐of‐year (YOY) great sturgeon, Huso huso. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 29, pp: 26-30.
39
Falahatkar, B., 2012. The metabolic effects of feeding and fasting in beluga Huso huso. Marine Environmental Research. Vol. 82, pp: 69-75.
40
Feng, G.; Shi, X.; Huanga, X. and Zhuanga, P., 2011. Oxidative stress and antioxidant defenses after long-term fasting in blood of Chinese sturgeon (Acipenser sinensis). Procedia Enviromental Sciences. Vol. 8, pp: 469-475.
41
Figueiredo-Garutti, M.L.; Navarro, I.; Capilla, E.; Souza, R.H.S.; Moraes, G.; Gutiérrez, J. and Vicentini-Paulino, M.L.M., 2002. Metabolic changes in Brycon cephalus (Teleostei, Characidae) during post-feeding and fasting. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular and Integrative Physiology. Vol. 132, pp: 467-476.
42
Friedrich, M. and Stepanowska, K., 2001. Effect of starvation on nutritive value of carp (Cyprinus carpio L.) and selected biochemical components of its blood. Acta Ichthyologica et Piscatoria. Vol. 31, pp: 29-33.
43
Gatlin, D.M.; Poe, W.E.; Wilson, R.P.; Ainsworth, A.J. and Bowser, P.R., 1986. Effects of stocking density and vitamin C status on vitamin E-adequate and vitamin E deficient fingerling channel catfish. Aquaculture. Vol. 56, pp: 187-195.
44
Gillis, T.E. and Ballantyne, J.S., 1996. The effects of starvation on plasma free amino acid and glucose concentrations in lake sturgeon. Journal of Fish Biology. Vol. 49, pp: 1306-1316.
45
Gornati, R.; Papis, E.; Rimoldi, S.; Terova, G.; Saroglia, M. and Bernardini, G., 2004. Rearing density influences the expression of stress-related genes in sea bass (Dicentrarchus labrax L). Gene. Vol. 341, pp: 111-118.
46
Habib, M.A.; Sharker, M.R.; Rahman, M.M.; Ahsan, M.E. and Pattader, S., 2014. Effect of feeding frequency on growth and survival in fry of gold fish, Carassius auratus (Hamilton) in outdoor rearing system.
47
Hastein, T., 2004. Animal welfare issues relating to aquaculture. In: Proceedings of the Global Conference on Animal Welfare: an OIE Initiative. Paris. France: World Organization for Animal Health. pp: 212-220.
48
Hickling, S.; Martin, M.T. and Brewster, B., 2007. The Essential Book of Koi: A Complete Guide to Keeping and Care. TFH Publications Inc., New Jersey. 256 p.
49
Holm, J.C.; Refstie, T. and Bo, S., 1990. The Effect of Stocking density on growth and size variation in cultured turbot, (Scophthalmus maximus) and sole, (Solea solea). International Council for the Exploration of the Sea Conference and Meeting, Document 1998/L-10, 1990.
50
Jha, P. and Barat, S., 2005. The effect of stocking density on growth, survival rate, and number of marketable fish produced of Koi carps, Cyprinus carpio vri. Koi in concrete tanks. Journal of Applied Aquaculture. Vol. 17, No. 3, pp: 89-102.
51
Jobling, M., 1980. Effect of starvation on proximate chemical composition and energy utilization of Plaice, Pleuronectes platessa L. Journal of Fish Biology. Vol. 17, pp: 325-334.
52
Jorgensen, E.H.; Christiansen, J.S. and Jobling, M., 1993. Effects of stocking density on food intake, growth performance and oxygen consumption in Arctic charr (Salvelinus alpines). Aquaculture. Vol. 110, pp: 191-204.
53
Johansson-Sjöbeck, M.L.; Dave, G.; Larsson, Å.; Lewander, K. and Lidman, U.L.F., 1975. Metabolic and hematological effects of starvation in the European eel, Anguilla anguilla L. II. Hematology. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Physiology. Vol. 52, pp: 431-434.
54
Kjartansson, H.; Fivelstad, S.; Thomassen, J.M. and Smith, M.J., 1988. Effects of different stocking densities on physiological parameters and growth of adult Atlantic salmon (Salmo salar L.) reared in circular tanks. Aquaculture. Vol. 73, pp: 261-274.
55
Krogdahl, Å. and Bakke-McKellep, A.M., 2005. Fasting and refeeding cause rapid changes in intestinal tissue mass and digestive enzyme capacities of Atlantic salmon (Salmo salar L.). Comparative Biochemistry and Physiology: Molecular and Integrative Physiology. Vol. 141, pp: 450-460.
56
Larsen, D.A.; Beckman, B.R. and Dickhoff, W.W., 2001. The effect of low temperature and fasting during the winter on metabolic stores and endocrine physiology (insulin, insulin-like growth factor, and thyroxine) of coho salmon, Oncorhynchus kisutch. General and Comparative Endocrinology. Vol. 123, pp: 308-323.
57
Lee, H.J. and Lee, S.Y., 2001. Heat transfer correlation for boiling flows in small rectangular horizontal channels with low aspect ratios. International Journal of Multiphase Flow. Vol. 27, pp: 2043-2062.
58
Lopez-Luna, J.; Vasquez, L.; Torrent, F. and Villarroel, M., 2013. Short-term fasting and welfare prior to slaughter in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Aquaculture. Vol. 400, pp: 142-147.
59
Martinez, F.J.; Garcia-Riera, M.P.; Ganteras, M.; De Costa, J. and Zamora, S., 1994. Blood parameters in rainbow trout (Oncorhyncgus mykiss): simultaneous influence of various factors. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Physiology. Vol. 107, No. 1, pp: 95-100.
60
Martines-Porchas, M.; Martines-Cordova, L.R. and Ramos-Enriquez, R., 2009. Cortisol and glucose: reliable indicators of fish stress? Pan American Journal of Aquatic Sciences. Vol. 4, No. 2, pp: 158-178.
61
Mazon, A.F.; Monteiro, E.A.S.; Pinteiro, G.H. and Fernandes, M.N., 2002. Hematological and physiological changes induced by short-term exposure to copper in the freshwater fish (Prochilodus scrofa). Brazilian Journal of Biology. Vol. 62, No. 4, pp: 621-631.
62
Méndez, G. and Wieser, W., 1993. Metabolic responses to food deprivation and refeeding in juveniles of Rutilus rutilus (Teleostie: Cyprinidae). Environmental Biology of Fish. Vol. 36, pp: 73-81.
63
Merino, G.E.; Piedrahita, R.H. and Conklin, D.E., 2007. The effect of fish stocking density on the growth of California halibut (Paralichthys californicus) juveniles. Aquaculture. Vol. 265, pp: 176-186.
64
Miglavs, I. and Jobling, M., 1989. The effects of feeding regime on proximate body composition and patterns of energy deposition in juvenile Arctic charr, Salvelinus alpinus. Juornal Fish Biology. Vol. 35, pp: 1-11.
65
Mollah, M.F.A., 1985. Effects of stocking density and water depth on growth and survival of freshwater catfish (Clarias macrocephalus) larvae. Indian Journal of Fisheries. Vol. 32, pp: 1-17.
66
Montero, D.; Izquierdo, M.S.; Tort, L.; Robaina, L. and Vergara, J.M., 1999. High stocking density produces crowding stress altering some physiological and biochemical parameters in gilthead seabream, Sparus auratus, juveniles. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 20, pp: 53-60.
67
Moradyan, H.; Karimi, H.; Gandomkar, H.A.; Sahraeian, M.R.; Ertefaat, S. and Sahafi, H.H., 2012. The effect of stocking density on growth parameters and survival rate of trout alevins (Oncorhynchus mykiss). World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 4, No. 5, pp: 480-485.
68
Narejo, N.T.; Salam, M.A.; Sabur, M.A. and Rahmatullah, S.M., 2005. Effect of stocking density on growth and survival of indigenous catfish, Heteropneustes fossilis (Bloch) reared in cemented cistern fed on formulated feed. Pakistan Journal of Zoology.Vol. 37, No. 1, pp: 49-52.
69
NEPAD. 2005. The NEPAD Action Plan for the Development of African Fisheries and Aquaculture. The New Partnership for Africa’s Development-Fish for All Summit, Abuja, Nigeria.
70
North, B.P.; Turnbull, J.F.; Ellis, T.; Porter, M.J.; Miguad, H.; Bron, J. and Bromage, N.R., 2006. The impact of stocking density on the welfare of rainbow trout (Onchorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 255, No. 1-4, pp: 466-479.
71
Olivereau, M. and Olivereau, J.M., 1997. Long-term starvation in the European eel (Anguilla anguilla): general effects and responses of pituitary growth hormone-(GH) and somatostatin-(SL) secreting cells. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 17, pp: 261-269.
72
Papoutsoglou, S.E.; Papoutsoglou, E. and Alexis, M.N., 1987. Effect of density on growth rate and production of rainbow trout (Salmo gairdneri Rich.). Aquaculture. Vol. 66, pp: 9-17.
73
Papst, M.H.; Dick, T.A.; Arnason, A.N. and Engel, C.E., 1992. Effect of rearing density in the early growth and variation in growth of juvenile Arctic charr (Salvelinus alpinus) (L.). Aquaculture Research. Vol. 23, No. 1, pp: 41-47.
74
Park, I.S.; Hur, J.W. and Choi, J.W., 2012. Hematological responses, survival, and respiratory exchange in the olive flounder, Paralichthys olivaceus, during starvation. Asian Australasian Journal of Animal Sciences. Vol. 25, pp: 1276-1284.
75
Park, I.S.; Woo, S.R.; Kim, E.M. and Cho, S.H., 2006. Effect of feeding and starvation on growth and phenotypic trait in olive flounder, Paralichthys olivaceus (Temminck et Schlegel). Aquaculture. Vol. 19, pp: 183-187.
76
Rahman, M.M. and Verdegem, M.C.J., 2010. Effects of intra- and interspecific competition on diet, growth and behaviour of Labeo calbasu (Hamilton) and Cirrhinus cirrhosus (Bloch). Applied Animal Behavioural Scienec. Vol. 128, pp: 103-108.
77
Rafatnezhad, S.; Falahatkar, B. and Gilani, M.H.T., 2008. Effects of stocking density on haematological parameters, growth and fin erosion of great sturgeon (Huso huso) juveniles. Aquaculture Research. Vol. 39, pp: 1506-1513.
78
Řehulka, J.; Minařík, B.; Adamec, V. and Řehulková, E., 2005. Investigations of physiological and pathological levels of total plasma protein in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Aquaculture Research. Vol. 36, pp: 22-32.
79
Řehulka, J., 2000. Influence of astaxanthin on growth rate, condition, and some blood indices of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Aquaculture. Vol. 190, pp: 27-47.
80
Samad, A.M.D.; Khatun, A.; Reza, S.M.D. and Asrafuzzaman, M.D., 2016. Effects of stocking density on growth, survival and production of mirror carp (Cyprinus carpio var. specularis) spawn in nursery pond. Asian Journal of Medical and Biological Research. Vol. 2, No. 3, pp: 429-435.
81
Samad, A.P.A.; Hua, N.F. and Chou, L.M., 2014. Effects of stocking density on growth and feed utilization of grouper (Epinephelus coioides) reared in recirculation and flow through water system. African Journal of Agricultural Research. Vol. 9, No. 9, pp: 812-822.
82
Santos, G.A.; Schrama, J.W.; Mamuag, R.E.P.; Rombout, J.H.W.M. and Verreth, J.A.J., 2010. Chronic stress impairs performance. Energy metabolism and welfare indicators in European seabass (Dicentrarchus labrax): The combined effects of fish crowding and water quality deterioration. Aquaculture. Vol. 299, pp: 73-80.
83
Schmidt, K.; Steinberg, C.E.W.; Pflugmacher, S. and Staaks, G.B.O., 2005. Xenobiotic substances such as PCB mixtures Aroclor 1254) and TBT can influence swimming behavior and biotransformation activity (GST) of carp (Cyprinus carpio). Environmental Toxicology. Vol. 19, pp: 460-470.
84
Schnaittacher, G.; King, W. and Berlinsky, D.L., 2005. The effects of feeding frequency on growth of juvenile Atlantic halibut, Hippoglossus hippoglossus L. Aquaculture Research. Vol. 36, pp: 370-377.
85
Schram, E.; Van der Heul, W.; Kamstra, A. and Verdegem, M.C.J., 2006. Stocking density dependent growth of Dover sole(Solea solea). Aquaculture. Vol. 252, pp: 339-347.
86
Sirakov, I. and Ivancheva, E., 2008. Influence of stocking density on the growth performance of rainbow trout and brown trout grown in recirculation system. Bulgarian Journal of Agricultural Science. Vol. 14, No. 2, pp:150-154.
87
Sloman, K.A. and Armstrong, J.D., 2002. Physiological effects of dominance hierarchies: Laboratory artifacts' or natural phenomena. Journal of Fish Biology. Vol. 61, pp: 1-23.
88
Small, B.C. and Peterson, B.C., 2005. Establishment of a time-resolved fluoroimmunoassay for measuring plasma insulin-like growth factor I (IGF-I) in fish: effect of fasting on plasma concentrations and tissue mRNA expression of IGF-I and growth hormone (GH) in channel catfish (Ictalurus punctatus). Domestic Animal Endocrinology. Vol. 28, pp: 202-215.
89
Stoyanova, S.T.N. and Staykov, Y.S., 2017. Effect of stocking density on growth performance, feed conversion and fish production of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss), cultivated in raceways. Journal of Agricultural Sciences. Vol. 23, No. 1, pp:154-158.
90
Stuart, J.; Rowlanda, J.; Mifsuda, C.; Nixona, M. and Boydb, P., 2006. Effects of stocking density on the performance of theAustralian freshwater silver perch (Bidyanus bidyanus) in cages.Aquaculture. Vol. 253, pp: 1-4.
91
Tavares-Dias, M.E.; Sandrim, D.S.; Moraes, F.D. and Carneiro, P.F., 2001. Physiological responses of tambaqui Colossoma macropomum (Characidae) to acute stress. Boletim do Instituto de Pesca. Vol. 27, No. 1, pp: 43-48.
92
Tian, X.; Fang, J. and Dong, S., 2010. Effects of starvation and recovery on the growth, metabolism and energy budget of juvenile tongue sole (Cynoglossus semilaevis). Aquaculture. Vol. 310, pp: 122-129.
93
Turnbull, J.; Alisdair, B.; Colin, A.; James, B. and Felicity, H., 2005. Stocking density and welfare of cage farmed Atlantic salmon: Application of multivariate analysis. Aquaculture. Vol. 243, pp: 121-132.
94
Umanah, S.I. and Dapa, T., 2017. The effect of stocking density on the growth performance and feed utilization of albino Clarias gariepinus reared in collapsible tarpulin tanks. American Journal of Innovative Research and Applied Sciences. Vol. 5, No. 2, pp: 138-144.
95
Wall, A.J., 2000. Ethical considerations in the handling and slaughter of farmed fish. In: Kestin SC, Warris PD, editors. Farmed Fish Quality. Oxford: Oxford Fishing News Books. pp: 108-115.
96
Wanger, E.J.; Jeppsen, T.; Amdt, R.; Routledge, M.D. and Bradwisch, Q., 1997. Effect of rearing density upon cutthledge trout hematology, hatchery performance, fin erosion, and general health and condition. The Progressive Fish-Culturist. Vol. 59, No. 3, pp: 173-187.
97
Watanabe, W.O.; Clark, J.H.; Dunham, J.B.; Wicklund, R.I. and Olla, B.L., 1990. Culture of Florida red tilapia in marine cages: the effect of stocking density and dietary protein on growth. Aquaculture. Vol. 90, pp: 123-134.
98
Wedemeyer, G.A.; Barton, B.A. and McLaey, D., 1990. Stress and Acclimation. In: Schreck, C. B., Moyle, P. B. (Eds.), Methods for Fish Biology, American Fisheries Society, Bethesda, Maryland. pp: 451-489.
99
Yarmohammadi, M.; Pourkazemi, M.; Kazemi, R.; Pourdehghani, M.; Saber, M.H. and Azizzadeh, L., 2015. Effects of starvation and re-feeding on some hematological and plasma biochemical parameters of juvenile Persian sturgeon, Acipenser persicus Borodin, 1897. Caspian Journal of Environmental Sciences. Vol. 13, pp: 129-140.
100
Yokoyama, H.; Takashi, T.; Ishihi, Y. and Abo, K., 2009. Effects of restricted feeding on growth of red sea bream and sedimentation of aquaculture wastes. Aquaculture. Vol. 286, pp: 80-88.
101
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه شاخص های رشد ماهی کپور علف خوار(Ctenopharyngodon idella) وارداتی از کشور چین با ماهی کپور علفخوار استان خوزستان
این تحقیق با هدف افزایش عملکرد صفت اقتصادی رشد در جمعیت ماهیان کپور علف خوار (Ctenopharyngodon idella) در داخل کشور از طریق واردات لارو ماهی کپور علف خوار از کشور چین و پرورش آنان در استخرهای خاکی، احیای نسل ماهی کپور علف خوار کشور (از طریق تکثیر مولدین) انجام شد. عملیات اجرایی پروژه به صورت هم زمان با مشارکت بخش دولتی (مرکز تکثیر و پرورش شهید ملکی استان خوزستان) و مراکز بخش خصوصی مشتمل بر: مرکز تکثیر شرکت آبزی، مرکز تکثیر شرکت ماهی کارون مرکز تکثیر آبزیان شوش، به صورت هم زمان با ورود لاروهای ماهی کپور علف خوار از کشور چین انجام گرفت. بچه ماهیان پس از گذراندن دوره قرنطینه و آداپتاسیون با محیط، با رعایت ضوابط فرآیند هم دما سازی، در استخرهای پرورشی با تراکم یکسان ذخیره سازی (Stocking) شدند. ذخیره سازی به میزان متوسط 3200 بچه ماهی درهکتار طول دوره رشد مشتمل بر یک دوره پرورش (یک سال) بود. برای بارورسازی استخرها علاوه بر کود پایه در طی دوران پرورش از کودهای آلی (گاوی) به میزان 24 تن هر دو روز یک بار و از انواع کودهای معدنی (شیمیایی) به میزان 1012/5 کیلوگرم هر سه روز یک بار استفاده شد و در حین دوره پرورش عملیات زیست سنجی در مقاطع مختلف رشد به منظور سنجش پارامترهای زیستی از قبیل محاسبه شاخص افزایش روزانه وزن بدن (DWG)، ضریب چاقی یا شاخص وضعیت (CF)، ضریب رشد ویژه (SGR) و محاسبه رابطه طول و وزن، ضریب مرگ و میر، بچه ماهیان انجام شد. تغذیه ماهیان به صورت دو بار در روز (صبح و عصر) و با استفاده از گیاه علوفه ای یونجه انجام شد. بررسی معادله رشد ماهی کپور علف خوار وارداتی حاکی از وجود همبستگی مثبت به میزان 95% بین پارامترهای طول و وزن در جمعیت ماهی کپور علف خوار وارداتی در سطح آماری (0/05>P) است. در مطالعه انجام شده میزان ضریب همبستگی بین طول و وزن ماهی درخصوص ماهیان وارداتی دارای اختلاف چشمگیری نسبت به این ضریب در معادله رشد جمعیت ماهی کپور علف خوار داخلی است. هم چنین در بین مزارع مورد مطالعه بیش ترین میزان رشد کپور علف خوار وارداتی در شرکت ماهی کارون مشاهده شد. به طوری که شرکت ماهی کارون بالاترین مقدار(0/03±1/4) ضریب چاقی در بین مزارع پرورش ماهی کپور علف خوار را به خود اختصاص داده است. در مجموع، میزان پارامترهای رشد کپور علف خوار وارداتی به صورت معنی دار در سطح آماری (0/05>P)، بیش از رشد کپور علف خوار داخلی در پایان دوره پرورش بوده است. از سوی دیگر، مقدار قابل ملاحظه ضریب همبستگی طول و وزن در نسل حاضر دلالت بر آن داشته که از نظر اصلاح نژادی جمعیت ماهی کپور علف خوار وارداتی دارای ارجحیت های زیستی نسبت به جمعیت مشابه داخلی می باشد. لذا با اطمینان می توان نسیت به انتخاب ماهیان مولد کپور علف خوار وارداتی برتر (با ضریب رشد بالاتر) در جمعیت مذکور پرداخته و از طریق عملیات تلاقی گری، نسبت به انتقال ژنوم آن ها را در ذخایر ژنتیکی جمعیت ماهیان کپور علف خوار داخلی درفاز بعدی تحقیقات پرداخت.
http://www.aejournal.ir/article_106876_f7c0b4f3de6fc04cad714d12d5b9c70d.pdf
2020-06-21
221
232
10.22034/aej.2020.106876
کپور علف خوار
پرورش
ماهیان گرمابی
رشد
کپور وارداتی
منصور
شریفیان
sharif_23m@yahoo.com
1
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
همایون
حسین زاده صحافی
h_hosseinzadeh@yahoo.com
2
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
حسین
عبدالحی
hossein_abdolhay@yahoo.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
امینی، ف.، 1378. مبانی ژنتیک و اصلاح نژاد ماهیان. صفحات 231 تا 236.
1
حسین زاده صحافی، ه. و شریفیان، م.، 1391. مطالعات راهبردی ماهیان گرمابی، موسسه تحقیقات شیلات ایران.
2
خوش خلق، م.، 1378. تکثیر و پرورش کپور و سایر ماهیان پرورشی. انتشارات دانشگاه گیلان. 177 صفحه.
3
دهدشتی، ب.، 1371. مدیریت پرورش ماهیان گرم آبی. شرکت سهامی شیلات ایران (معاونت تکثیر و پرورش آبزیان). 197 صفحه.
4
زهتاب پور، ا.؛ طوطیان، ز.؛ امیرکلایی، ک. و مزدقانی، م.، 1393. کالبدشناسایی لوله گوارش کپور علف خوار. نشریه دامپزشکی. شماره 93، صفحات 45 تا 51.
5
عطائی، ف.، 1381. بررسی تنوع ژنتیکی تاس ماهی ایران در رودخانه سفیدرود با استفاده از روش مولکولی PCR-RFLP روی mt-DNA و اطلاعات مورفولوژیکی. پایان نامه کارشناسی ارشد علوم جانوری، دانشگاه شهید بهشتی.
6
قانعی، م.، 1393. شاخص های رشد ماهی قزل آلای رنگین کمان در استخرهای خاکی با استفاده از آب لب شور زیر زمینی. مجله شیلات دانشگاه آزاد اسلامی واحد آزادشهر. سال 8، صفحات 29 تا 38.
7
سازمان شیلات ایران. 1396. گزارش عملکرد دفتر آبزیان آب شیرین. معاونت توسعه آبزی پروری. 65 صفحه.
8
محمدیان، ح.، 1378. ماهیان آب شیرین ایران. مرکز نشر سپهر. 178 صفحه.
9
Ai, Q.; Mai, K.; Tan, B.; Xu, W.; Duan, Q.; Ma, H. and Zhang, L., 2006. Replacement of fish meal by meat and bone meal in diets for large Yellow croaker (Pseudosciaena crocea). Aquaculture. Vol. 260, pp: 255-263.
10
Austreng, E., 1978. Digestibility determination in fish using chromic oxide marking and analysis of contents from different segments of the gastrointestinal tract. Aquaculture. Vol. 13, pp: 265-272.
11
Berg, L.S., 1964. Freshwater Fishes of The USSR and Adjacent Countries. Academy of Sciences of the USSR, (Translated from Russian, Israel Program for Scientific Translations), Vol. 2, 4th Edition, Jerusalem (Russian Version Published 1949). 496 p.
12
Bagenal, T., 1978a. Methods for assessment of fish production in freshwater. 3 rd edition. Blackwell Scientific Publication Oxford. London Edinburgh Melbourne. 365 p.
13
Bonar, S.A.; Bolding, B.; Divens, M. and Washington, S., 1996. Management of aquatic plants in Washington State using grass carp: Effects on aquatic plants, water quality, and public satisfaction 1990-1995. Olympia, WA: Washington Dept. of Fish and Wildlife, Fish Management Program Inland Fish Division Research.
14
Buckley, B.R. and Stott, B., 1977. Grass carp in a sport fishery. Fisheries Management. Vol. 8, No. 1, pp: 8-10.
15
Conover, G.; Simmonds, R. and Whalen, M., 2007. Management and control plan for bighead, black, grass, and silver carps in the United States. Asian Carp Working Group, Aquatic Nuisance Species Task Force, Washington, D.C. 223 p.
16
Cudmore, B.; Jones, L.A.; Mandrak, N.E.; Dettmers, J.; Chapman, D.C.; Kolar, C.S. and Conover, G., 2017. Ecological risk assessment of grass carp (Ctenopharyngodon idella) for theGreat Lakes Basin. DFO Can. Sci. Advis. Sec. Res. Doc. 2016/118 (vi + 115 p).
17
Cudmore, B. and Mandrak, N., 2004. Biological Synopsis of Grass Carp (Ctenopharyngodon idella). Fisheries and Oceans Canada.
18
Ellingsen, H. and Aanondsen, S.A., 2006. Environmental Impacts of Wild Caught Cod and Farmed Salmon-A Comparison with Chicken (7 pp). The International Journal of Life Cycle Assessment. Vol. 11, pp: 60-65.
19
Ellis, J.E., 1974. Observations on the jumping and escapement of white amur. Rogressive Fish Culturist. Vol. 36, No. 1, pp: 15.
20
FAO. 2015. Fishery and aquaculture country profile. Population 10, 000.
21
Hedric, P.W., 1998. Geneticc of population. Arizona State university. 553 p.
22
Hevroy, E.M.; Espe, M.; Waagbo, R.; Sandness, K.; Rund, M. and Hemre, G., 2005. Nutrition utilization in Atlantic salmon (Salmo salar) fed increased level of fish protein hydrolyses during a period of fast growth. Aquacul. Nutr. Vol. 11, pp: 301-313.
23
Hile, R., 1936. Age and growth of the cisco leucichthys artedi in the lakes of the north eastern high lands. wisconsin. Bull. US. Bur. Fishes. 23 p.
24
Loch, J.J.; Bonar, S.A. and Washington, S., 1997. Occurrence of grass carp in the lower Columbia and Snake Rivers Olympia, WA: Washington Dept. of Fish and Wildlife.
25
Mitchell, A.J. and Kelly, A.M., 2006. The public sector role in the establishment of grass carp in the United States. Fisheries. Vol. 31, pp: 113-121.
26
Nikolsky, G.V. and Aliyev, D.D., 1974. The role of far eastern herbivorous fishes in the ecosystems of natural waters in which they are acclimatized. Journal of Ichthology.
27
Vol. 14, pp: 842-847.
28
Opuszynski, K., 1972. The use of phytophagous fish to control aquatic plants, Aquaculture. Vol. 1, pp: 61-74.
29
Ricker, W.E., 1973. Linear regressions in fishery research. J of fisheries research board of Canada. Vol. 30, pp: 409-434.
30
Sokal, R.R. and Rohlf, F.J., 1987. Introduction to Biostatistics. W.H. Freeman, New York, USA.
31
Standish, K.A. and Wattendorf, J.R., 1987. Triploid Grass Carp: Status and Management Implications. Fisheries. Vol. 12, No. 4, pp: 20-24.
32
Stanley, J.G.; Miley, W.W. and Sutton, D.C., 1987. Reproductive requirments and likehood for naturalization of escaped grass carp in the USA. Transactions of the American Fisheries Society.
33
Su, J.; Zhu, Z.; Wang, Y.; Zou, J.; Wang, N. amd Jang, S., 2009. Grass carp reovirus activates RNAi pathway in minnow, Gobiocypris rarus. Aquaculture. Vol. 289, pp: 1-5.
34
Sumbuloglu, K. and Sumbuloglu, V., 2000. Biyoistatistik. Hatipoglu Yayınları, No: 53, Ankara. 269 p.
35
Tacon, A.G.J., 1990. Standard method for nutritional and feeding of farmed fish and shrimp. Argent librations press. Redmond, Wash. Vol. 1, 117 p.
36
Templeton, N.S., 2004. Gene and cell therapy: therapeutic mechanisms and strategies, Marcel Dekker, New York.
37
Van der Lee, A.S.; Johnson, T.B. and Koops, M.A., 2017. Bioenergetics modelling of grass carp: estimated individual consumption and population impacts on Great Lakes wetlands. J. Great Lakes Res. Vol. 43, pp: 308-318.
38
Venkatramanjam, K. and Raamanthan, N., 1994. Manual of finfish biology. Oxford & IBH publishing Co.
39
Waples, R.S., 1990. Conservation genetics of Pacific salmon. Estimating effective population size. Journal of Heredity. Vol. 81, pp: 277-289.
40
Wang, L.; Su, J.; Peng, L.; Heng, J. and Chen, L., 2011. Genomic structure of grass carp Mx2 and the association of its polymorphisms with susceptibility/resistance to grass carp reovirus. Molecular Immunology. Vol. 49, pp: 359-366.
41
Washington, S., 1990. Grass carp use in Washington. Olympia, Wash.: Washington Dept. of Wildlife, Fisheries Management Division.
42
Wittmann, M.E.; Jerde, C.L.; Howeth, J.G.; Maher, S.P.; Deines, A.M.; Jenkins, J.A.; Whitledge, G.W.; Burbank, S.R.; Chadderton, W.L.; Mahon, A.R.; Tyson, J.T.; Gantz, C.A.; Keller, R.P.; Drake, J.M. and Lodge, D.M., 2014. Grass carp in the Great Lakes region: establishment potential, expert perceptions, and re-evaluation of experimental evidence of ecological impact. Can. J. Fish. Aquat. Sci. Vol. 71, pp: 992-999.
43
Whitmore, H., 1990. Electrophoresis and isoelectric focusing technique in fisheries management, PCR. Press, INC. 150 p.
44
ORIGINAL_ARTICLE
ارتباط بین وزن و برخی از شاخص های خون شناسی و بیوشیمیایی سرم خون ماهی کپورنقره ای (Hypophthalmichthys molitrix)
در این بررسی رابطه وزن ماهی با تغییرات برخی از پارامترهای خون شناسی و بیوشیمیایی سرم خون ماهی کپورنقره ای مورد مطالعه قرار گرفت. بدین منظور از ماهیان پرورشی کپور نقره ای 2 ساله در زمستان 1396 در 5 گروه وزنی : 500 ، 700 ، 1000، 1300 و 1600 گرم نمونه گیری به عمل آمد. به منظور بررسی شاخص های خونی کپور نقره ای در هر گروه وزنی تعداد 5 عدد ماهی انتخاب گردید و سپس به منظور تسهیل در امر نمونه برداری با استفاده از قطع ورید ساقه دمی خونگیری انجام پذیرفت. سپس میزان فاکتورهای هماتولوژی و بیوشیمیایی سرم خون در آزمایشگاه خون شناسی و توسط دستگاه های اتوماتیک تعیین گردید. براساس نتایج به دست آمده مشخص گردید که افزایش وزن ماهی کپور نقره ای در میزان گلبول های سفید، گلبول های قرمز، هموگلوبین، هماتوکریت، MCV، MCH، MCHC، PLT، لنفوسیت، مونوسیت و گرانولوسیت تاثیر نداشته و از این لحاظ هیچ گونه اختلاف معنی دار آماری در گروه های مختلف وزنی وجود نداشت (0/05<p). هم چنین نتایج بررسی برخی از شاخص های بیوشیمیایی سرم خون نشان داد به غیر از کلسیم که در گروه وزنی 1600 گرم کپور نقره ای بیش تر از گروه های وزنی دیگر بود (0/05>p)، افزایش وزن تاثیری در مقدار گلوکز، اوره، تری گلیسرید، کلسترول، فسفر، سدیم، پتاسیم، آلبومین و توتال پروتئین ندارد (0/05<p). نتایج این بررسی نشان داد تغییرات وزن بدن ماهی کپور نقره ای هم سن تاثیری برمیزان شاخص هایخونی و بیوشیمیایی سرم خون ندارد.
http://www.aejournal.ir/article_106911_5b58706c1452ee8a32d19648ae9e32cb.pdf
2020-06-21
233
238
10.22034/aej.2020.106911
بیوشیمیایی
خون شناسی
کپور نقره ای
وزن
حاجی محمد
شیرمحمدلی
haji.23351@gmail.com
1
گروه فراوری محصولات شیلاتی، واحد گرگان، دانشگاه آزاد اسلامی، گرگان، ایران
AUTHOR
مجید
محمدنژاد
m_mohammadnejad2013@yahoo.com
2
گروه شیلات، واحد بندرگز، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرگز، ایران
LEAD_AUTHOR
شهربانو
عالمی رستمی
sh_alemi_r@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی، واحد گرگان، دانشگاه آزاد اسلامی، گرگان، ایران
AUTHOR
اجاق، س.م.؛ فاطمی راد، ف.؛ کردجزی، م. و جمشیدی، ا.، 1395. اثر درصدهای مختلف ترکیب سوریمی ماهی کپور نقره ای (Hypophthalmichthys molitrix) و مینس میگوی سفید هندی (Penaeus indicus) بر بهبود ویژگی های کیفی ناگت میگو. شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 69، شماره3، صفحات 297 تا 285.
1
بیداریان منیری، ا.؛ خارا، ح.؛ نظامی بلوچی، ش. و صادق پور، ع.، 1392. ارزیابی اثر سن روی برخی از پارمترهای سلولی و بیوشیمیایی خون ماهی ﮐﭙﻮرﻧﻘﺮه ای (Hypophthalmichthys molitrix Valenciennes, 1884). فصلنامه فیزیولوژی و تکوین جانوری دانشگاه آزاد اسلامی واحد زنجان. شماره پیاپی 21، جلد 6، شماره 2، صفحات 57 تا 67.
2
تجری، م.؛ هدایتی، س.ع.؛ کلنگی میاندره، ح. و جهانبخشی، ع.، 1395. ﺗﻌﯿﯿﻦ ﺳﻤﯿﺖ ﮐﺸﻨﺪه و اﺛﺮات ﺳﻢ ﺳﺎﯾﭙﺮﻣﺘﺮﯾﻦ ﺑﺮ ﺷﺎﺧﺺﻫﺎی ﻫﻤﺎﺗﻮﻟﻮژﯾﮑﯽ ﻣﺎﻫﯽ ﮐﭙﻮر ﻧﻘﺮه ای (Hypophthalmichthys molitrix Valenciennes, 1884). ﻧﺸﺮﯾﻪ ﻓﻦ آوری ﻧﻮﯾﻦ در ﺗﻮﺳﻌﻪ آبزی ﭘﺮوری، داﻧﺸﮕﺎه آزاد اﺳﻼﻣﯽ، واﺣﺪ آزادﺷﻬﺮ. سال 10، شماره 1، صفحات 67 تا 76.
3
جمیلی، ش.؛ ماشین چیانمرادی، ع.؛ بهمنی، م. و کیانی ضیابری، ک.، 1378. بررسی و شناخت فاکتورهای خونی اردک ماهی تالاب انزلی. اولین کنفرانس ملی علوم و شیلات و آبزیان ایران و لاهیجان. صفحات 37 تا 39.
4
حسینی فرد، س.م.؛ قبادی، ش.؛ خدابخش، ا.و رزاقی منصور، م.، 1392. تاثیر جیره های حاوی سطوح مختلف آرد سویا همراه با مکمل آنزیمی آویزایم بر شاخص های هماتولوژی و بیوشیمیایی سرم خون ماهی قزل آلای رنگین کمان. مجله دامپزشکی ایران، دوره 9، شماره 3، صفحات 43 تا 53.
5
حیدری، ب.؛ گلچین راد، ع.؛ حقی، ن. و یاوری، ل.، 1392. مطالعه پاسخ فیزیولوژیکی ماهی فیتوفاگ Hypophthalmichthys) molitrix) در پاسخ به شویندههای آنیونی. اقیانوس شناسی. سال 4، شماره 14، صفحات 69 تا 76.
6
سراجیان، ش.، 1385. بررسی و مقایسه برخی از فاکتورهای خونی و هورمون های استروئیدی در ماهیان ماده نارس و بالغ کفال طلایی دریای خزر (Liza auratus). پایان نامه دانشجویی دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان. 113 صفحه.
7
سعیدی، ع.؛ پورغلام، ر.؛ نصرآباد، ع.و کامکار، م.، 1382. مقایسه برخی پارامترهای هماتولوژیکال و بیوکمیکال (تعداد اریتروسیت ها، مقادیر هماتوکریت و هموگلوبین، اندیس های خونی شامل M.C.H.C و M.C.V و گلوکز یا قندخون) در بچه ماهی قره برون در شرایط دریا. همایش ملی منطقه ای ماهیان خاویاری. شماره 1 ، صفحات 99 تا 106.
8
شکوری، م.؛ ابدالی، س.؛ نگارستان، ح. و حلاجیان، ع.، 1391. بررسی اثر فلز روی بر برخی از شاخص های خونی ماهی فیتوفاگ (Hypophthalmichthys molitrix) . مچله پژوهش علوم و فنون دریایی. سال 12، شماره 1، صفحات 69 تا 82.
9
شکوری، م. و ابدالی، س.، 1396. بررسی اثر سمیت سرب (Pb) بر برخی از پارامترهای بیوشیمیایی خون بچه ماهی فیتوفاگ پرورشی (Hypophthalmichthys molitrix) . مچله پژوهش علوم و فنون دریایی. سال 12، شماره 1، صفحات 72 تا 84.
10
ﻏﻼﻣﺰاده، م.؛ ﺣﺴﻴﻨﻲ، ه.؛ اسکندری، س.؛ حسینی، ا. و ﻏﻼﻣﺰاده، م.، 1392. مطالعه اﺛﺮ آنتی اکسیدانی عصاره های سیاه دانه، زیره سیاه و تلفیق آن ها ﺑﺮ تغییرات شیمیایی و خصوصیات حسی ماهی ﻛﭙﻮر ﻧﻘﺮه ای (Hypophthalmichthys molitrix) ﻧﮕﻪ داری ﺷﺪه در ﻳﺨﭽﺎل. بهداشت مواد غذایی. دوره 3، شماره 3، پیاپی 11، صفحات 11 تا 22.
11
فلاحتکار، ب.؛ راهداری، ع. و باقرپور، ا.، 1395. پاسخ های استرس و خون شناسی بچه ماهی کپور نقره ای Hypophthalmichthys)(molitrix به دستکاری های ناشی از صید. مجله فیزیولوژی و بیوتکنولوزی آیزیان. سال 4، شماره 2، صفحات 57 تا 73.
12
ﻗﺮاﮔﻮزﻟﻮ، س. و معینی، س.، 1388. ﺑﺮرﺳﻲ تغییرات شیمیایی و حسی خمیر ماهی تولید ﺷﺪه از ﻛﭙﻮر ﻧﻘﺮه ای در ﻃﻮل ﻧﮕﻪ داری در ﺳﺮدﺧﺎﻧﻪ 18- درﺟﻪ سلسیوس. مجله فن آوری های نوین در توسعه آبزی پروری (شیلات). سال 3، ﺷﻤﺎره 2، صفحات 45 تا 56.
13
ﻛﺎﻣﮕﺎر، م.؛ حبیبی، ف.؛ ﻟﻄﻔﻲ ﻧﮋاد، ح.؛ سعیدی، ع.؛ ﭘﻮرﻏﻼم، ر. و یوسفیان، م.، 1378. ﻣﻘﺎﻳﺴﻪ ﺗﻌﺪاد گلبول های سفید ﺧﻮن و ﺷﻤﺎرش اﻓﺘﺮاﻗﻲ آن ها در ماهیان ﺧﺎوﻳﺎری ﻗﺮه ﺑﺮون و دراﻛﻮل. ﻣﺠﻠﻪ پژوهش و سازندگی. شماره 44، صفحات 131 تا 133.
14
کیخسروی، ع.؛ عتباتی، آ.؛ وطن دوست، ج.؛ شمس، ه.؛ جلیلی، م. و روکی، ح.، 1389. تاثیر غلظت های نزدیک به کشنده کادمیوم بر روی برخی پارامترهای بیوشیمیایی در خون ماهی فیتوفاگ (Hypophthalmichthys molitrix) . اقیانوس شناسی. دوره 1، شماره 2، صفحات 11 تا 16.
15
محمد نژاد شموشکی، م.، 1392. تعیین برخی از فاکتورهای خونی و آنزیمی سرم خون ماهیان کپور، فیتوفاک و آمور. فصلنامه فیزیولوژی و تکوین جانوری دانشگاه آزاد اسلامی واحد زنجان. شماره پیاپی 21، جلد6، شماره 2، صفحات 35 تا 45.
16
محمد نژاد شموشکی، م.، 1393. بررسی مقایسه ای برخی از پارامترهای بیوشیمیایی سرم خون ماهی قزل آلای رنگین کمان در اندازه های مختلف. مجله زیست شناسی دریا، دانشگاه آزاداسلامی واحد اهواز. سال 6، شماره 23، صفحات 39 تا 47.
17
ﻣﺤﻤﺪی ﻣﻜﻮﻧﺪی، ز.؛ ﻛﻮچنین، پ. و پاشازاﻧﻮﺳﻲ، ح.، 1390. ﺑﺮرﺳﻲ اﺛﺮات ﺷﻮری ﺑﺮ ﻣﻘﺎدﻳﺮ هموگلوبین و هماتوکریت ماهی ﻛﭙﻮر ﻧﻘﺮه ای ﻗﺪ اﻧﮕﺸﺖ (Hypophthalmichthys molitrix). ﻣﺠﻠﻪ ﺗﺎﻻب، داﻧﺸﮕﺎه آزاد اﺳﻼﻣﻲ واﺣﺪ اهواز. ﺳﺎل 2، ﺷﻤﺎره 7، صفحات 11 تا 17.
18
نظیفی، س.؛ فیروزبخش، ف. و بلوکی، م.، 1379. بررسی پارامترهای بیوشیمیایی سرم خون ماهی کپور نقره ای در مسمومیت با تری کلروفن. مجله دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران. دوره 56، شماره2، صفحات 27 تا 23.
19
نظیفی، س.؛ فیروزبخش، ف. و قاضی زاده، م.، 1380. بررسی پارامترهای هماتولوژیک خون ماهی کپور نقره ای در مسمومیت با تری کلروفن. مجله دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران. دوره 55، شماره2، صفحات 55 تا 60.
20
هدایتی، س.ع.؛ جعفری، ا. و نصرالله پور مقدم، م.، 1393. ﺑﺮرﺳﻲ تغییرات شاخص های ﺧﻮن ﺷﻨﺎﺳﻲ و بیوشیمیایی ماهی فیتوفاگ (Hypophthalmichthys molitrix Valenciennes, 1884) در مواجهه ﺑﺎ ﻏﻠﻈﺖ های ﺣﺎد و ﺗﺤﺖ ﺣﺎد کادمیوم. فصلنامه علوم و فنون شیلات، دوره 3، ﺷﻤﺎرة 1، ﺻﻔﺤات 57 تا 67.
21
Ahmadi, K.; Banaee, M.; Vosoghei, A.R.; Mirvaghefei, A.R. and Ataeimehr, B., 2012. Evaluation of the immunomodulatory effects of silymarin extract (Silybummarianum) on some immune parameters of rainbow trout, Oncorhynchusmykiss (Actinopterygii, Salmoniformes, Salmonidae). ActaIchthyologica Pisca. Vol, 42, No. 2, pp: 113-120.
22
Cnaani, A.; Tinman, S.; Avidar, Y.; Ron, M.; and Hulata, G., 2004. Comparative study of biochemical parameters in response to stress in Oreochomis aureus, O. mossambicus and two strains of O. niloticus. Aquacult. Res. Vol. 35, pp: 1434-1440.
23
Kanieva, N.A., 2002. Changes in Hematological Indices of Fish Depending on the Level of Sublethal Petroleum Concentrations, in Proceedings of the Conference Ded-icated to the 105th Anniversary of KaspNIRKh. Modern Problems of the Caspian Region (Astrakhan). pp: 130-132.
24
Shaviklou, G.R., 1999. Handbook of fish paste and products. Naghshe Mehr Press. 82 p.
25
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثرات فلز سنگین روی بر برخی شاخص های فیزیولوژیک در بچه ماهیان فیتوفاگ (Hypophthalmichthys molitrix)پرورشی
در این تحقیق، به منظور تعیین سمیت حاد فلز سنگین روی بر شاخص های خونی و بیوشیمیایی بچه ماهی فیتوفاگ، 270 قطعه بچه ماهی با میانگین وزنی 8/1±51/6 گرم و میانگین طولی 2±17/1 سانتی متر در مجاورت غلظت های 0، 5 و 10 میلی گرم در لیتر نیترات روی Zn(NO3)2 در مجتمع دانشگاهی سراوان از آذر ماه 1395 تا بهمن ماه 1395 قرار گرفتند. نمونه برداری از ماهیان در زمان های 12، 24، 48، 72 و 96 ساعت انجام شد. نتایج نشان داد که درصد هماتوکریت (Hct) در غلظت های 5 و 10 میلی گرم در لیتر با شاهد اختلاف معنی داری داشت (0/05>p). هموگلوبین (Hb)خون ماهیان در بین تیمارها اختلاف معنی داری نشان نداد (0/05<p). نتایج شمارش افتراقی لکوسیت ها نشان داد که در غلظت های 5 و 10 میلی گرم در لیتر در زمان 96 ساعت با یکدیگر اختلاف معنی داری را نشان دادند (0/05>p). تعداد گلبول های قرمز (RBC) در غلظت های 5 و 10 در زمان های 12 و 96 ساعت با یکدیگر اختلاف معنی داری را نشان داد (0/05>p). این دو تیمار از لحاظ تعداد گلبول های قرمز نسبت به شاهد اختلاف معنی داری نشان دادند (0/05>p). میزان پروتئین کل در تیمارهای 5 و 10 میلی گرم در لیتر با شاهد اختلاف معنی داری را نشان دادند (0/05>p). کلسترول خون تیمار 10 میلی گرم در لیتر با تیمارهای 5 میلی گرم در لیتر و شاهد اختلاف معنی داری را نشان دادند (0/05>p). تری گلیسرید و آلبومین خون ماهیان هر سه تیمار با یکدیگر اختلاف معنی داری را نشان دادند (0/05>p). ولی کلسترول و گلوکز در بین تیمارها اختلاف معنی داری نشان نداد (0/05<p). براساس نتایج حاصل، شاخص های خونی فاکتورهای حساس در پایش سمیت نیترات روی و استرس ناشی از آن، به ویژه در غلظتهای مورد مطالعه می باشند.
http://www.aejournal.ir/article_106945_5fcd0fafadc829493e103b98733bedcf.pdf
2020-06-21
239
250
10.22034/aej.2020.106945
روی
شاخص های خونی
شاخص های بیوشیمیایی
فیتوفاگ
محمد جواد
سپاهی
sepahijavad@yahoo.com
1
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
دل آرام
نخبه زارع
delaram.zare@gmail.com
2
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
رها
فدایی راینی
fadaimahdiye@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه جیرفت، جیرفت، ایران
AUTHOR
طیبه
یوسفی
tayebeh.yousefi83@gmail.com
4
گروه تولیدات گیاهی، دانشکده کشاورزی، مجتمع آموزش عالی سراوان، سراوان، ایران
AUTHOR
امینی رنجبر، غ.، 1373. بررسی میزان تجمع فلزات سنگین در رسوبات تالاب انزلی. مجله علمی شیلات ایران. موسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران. 6 صفحه.
1
جلالی جعفری، ب. و آقازاده مشگی، م.، 1386. مسمومیت ماهیان در اثر فلزات سنگین و اهمیت آن در بهداشت عمومی. انتشارات کتاب. 36 صفحه.
2
رستمی بشمن، م. و سلطانی، م.، 1388. مطالعه اثرات بافتی دوز مزمن سولفات مس بر برخی اندام های ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) . مجله تحقیقات دامپزشکی (دانشگاه تهران). دوره 64، شماره 3، صفحات 193 تا 198.
3
غلامیان، س.، 1383. بررسی اثرات سمی مس بر بافت کبد و اندازه گیری پروتئین تام و برخی از آنزیم های سرم خون در ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio). پایان نامه کارشناسی ارشد. صفحات 5 تا 8.
4
فتح الهی، ر.؛ خارا، ح.؛ پژند، ذ.؛ شناورماسوله، ع.ر.؛ حلاجیان، ع. و مشتاقی، ب.، 1389. تعیین غلظت کشندگی (LC5096h) کلرید سدیم و اثرات آن بر بافت آبشش بچه تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus). نشریه علوم زیستی. دوره 4، شماره 3، صفحات 65 تا 72.
5
فرهنگی، م. و حاجی مرادلو، ع.، 1386. علایم بالینی و اثرات آسیب شناسی مسمومیت حاد با آمونیاک در قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). نشریه شیلات. دوره 1، شماره 4، صفحات 72 تا 79.
6
کاظمی، ر.؛ پوردهقانی، م.؛ یوسفی جوردهی، ا.؛ یارمحمدی، م. و نصری تجن، م.، 1389. فیزیولوژی دستگاه گردش خون آبزیان و فنون کاربردی خون شناسی ماهیان. انتشارات بازرگان. 194 صفحه.
7
ناجی، ط.؛ صفاییان، ش.؛ رستمی بشمن، م. و صبرجو، م.، 1386. بررسی اثرات سولفات روی بر بافت آبشش بچه ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). نشریه علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 9، شماره 2، صفحات 29 تا 36.
8
وثوقی، غ.م.؛ شاهسونی، د. و پیغان، ر.، 1376. بررسی فاکتورهای خونی ماهی حوض (Carassius auratus). مجله تحقیقات دامپزشکی (دانشگاه تهران). دوره 52، شماره 4، صفحات 36 تا 42.
9
میرزایی، ج.، 1383. مطالعه سمیت حاد فلزات سنگین سرب، روی، مس و کادمیوم بر دو گونه از ماهیان خاویاری دریای خزر (تاس ماهی ایرانی و ازون برون). پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان. 100 صفحه.
10
Akaheri, A. and Jozwiak, Z., 1999. Effect of Zinc on Common Carp (Cyprinus carpio) erythrocytes, Elsevier Science Inc. pp: 16-17.
11
Cazenave, J.; Wunderline, D.A.; Hued, A.C. and Bistoni, A., 2005. Haematological Parameters in a neotropical fish, Corydoras paleatus (Jenyns, 1842) (Pisces, Callichthyidae), Captured from Pristine and Polluted water.
12
Dunier, M. and Siwicki, A.K., 1992. In vitro effects of heavy metals on lymphocyte proliferation and phagocytic activity of macrophages in common carp (Cyprinus carpio). Symposium on Sub lethal and chronic toxic effects of pollutants on fresh water fish. Lugano. EIFAC/XVII/ 92/ Symp. 4, 12.
13
Emad, H.; Abou, E.N.; Khalid, M.; Moselhy, E. and Mohamed, A.H., 2005. Toxicity of cadmium and cooper and their effect on some biochemical parameters of marine fish Mugil seheli. Egyptian Journal of Aquatic Research, Vol. 31, pp: 60-71.
14
Gluth, G. and Hanke, W., 1985. A comparison of physiological changes in carp, Cyprinus carpio, induced by several pollutants at sublethal concentrations. I. the dependency on exposure time. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 9, No. 2, pp: 79-88.
15
Golovina, N.A., 1996. Morphofunctional characteristics of the blood of fish as objects of aquaculture. Doctoral Thesis. Moscow. 53 p (In Russian).
16
Gopal, V.; Parvathy, S. and Balasubra, P.R., 1997. Effect of heavy metals on the blood protein biochemistry of the fish Cyprinus carpio andits use as a bio - indicator of pollution stress. Environmental Monitoring and Assessment,Vol. 48, pp: 117-124.
17
Hines, R.S. and Yashouv, A., 1970. Differential leukocyte counts and total leukocyte and erythrocyte counts for some normal isvaeli mirror carp. Bamidgeh. Vol. 22, pp:106-113.
18
Hilmy, A.M.; El-Domiaty, N.A.; Daabees, A.Y. and Abdel Latife, H.A., 1987. Some physiological and biochemical indices of Zinc toxicity in two fresh water fishes, (Clarias lazera) and Tilapia zilli. Comp. Biochem. Physiol. pp: 297-301.
19
Jengetal, A. and Tailor, S., 1998. Comparetive heavy metal on tissue of comoon carp and other aquatic animals. Journal of fisheries. Vol. 9, pp: 45-53.
20
Klontz, G.W., 1994. Fish Hematology. In: Techniques in Fish Immunology, SOS Publications, and USA. ISBN: Vol. 2, pp: 121-132.
21
Lwaman, G.K.; Afonso, L. and Vijayan, M., 2004. Aqua net workshop on fish Welfare, Campbell River, B.C. Canada.
22
Lian- Tien, S. and Sen-Shyong, J., 1998. Comperative Zinc Concentration in Tissue of Common Carp and Other Aquatic Organisms. Zoological Studies, Vol. 37, No. 3, pp: 184-190.
23
Lithuania, M. and Zita, M., 1999. The effect of heavy metals on hematological indices of fish. Acta Zoological Journal. Vol. 9, No. 2, pp: 76-83.
24
Luskova, V., 1997. Annual cycles and normal value of hematological parameters in fishes. Acta Sc. Nat. Brno. Vol. 31, No. 5, pp: 70.
25
McClatchey, K.D., 2002. Clinical Laboratory Medicine. Williams and Wilkins, Philadelphia. 230 p.
26
Moss, D.W. and Henderson, A.R., 1999. Clinical enzymology. p: 617-721. In: Burtis, C.A. and Ashwood, E.R., (Eds.). Tietz Textbook of Clinical Chemistry. W.B. Saunders Company, Philadelphia.
27
Niimi, A.J., 1997. Biological and toxicological effects of environmental contaminations in fish. Canadian Jounal of fisheries and aquatic Science. Vol. 40, pp: 306-312.
28
Nikinma, M. and Huestis, W.H., 1987. Adrenergic swelling of nucleated erythrocyte: Cellular mechanism in a bird, domestic goose, and two teleosts, stripped bass and Rainbow trout. J. Exp Biol. Vol. 113, pp: 215-224.
29
Papagianis, I.; Kagalou, J.; Leonados, D.; Petridis, V. and Kalfakakou, I., 2003. Copper and Zinc in four freshwater fish species from Lake Pamvotis (Greek). Environ international. Vol. 30, pp: 357-362.
30
Pickering, A.D. and Pottinger, T.G., 1987. Lymphocytopenia and interregnal activity during sexual maturation in the brown trout, Fish Biology. Vol. 30, pp: 41-50.
31
Qureshi, M. and Winselt, B., 1992. Biochemical difference of Zinc on Common carp (Cyprinus carpio) liver. Journal of biochemistry. Vol. 37, No. 3, pp: 184-190.
32
Ranzani Paiva, M.J.T. and Godinho, H.M., 1985. Estudos haematologicos em curimbata, (Prochilodus scrofa) Steindachner, 1881 (Osteichthyes, Cypriniformes, Prochilodontidae). Serie Vermelha. Boletin do Instituto de pesca. Rios, F.S., Kalinin. Vol. 12, pp: 25-39.
33
Satheeshkumar, P.; Ananthan, G.; Senthilkumar, D. and Jeevanantham, K., 2010. Comparative investigation on hematological and biochemical studies on wild marine teleost fishes from Vellar estuary, southeast coast of India. Journal of Comparative Clinical Pathology. Vol. 10, pp: 1091-1095.
34
Serezli. Akhan, S. and Delihasan, F., 2011. Acute effects of copper and lead on some blood parameters on Coruh trout (Salmo coruhensis). African Journal of Biotechnology. Vol. 10, pp: 3204-3209.
35
Shayne, C.G., 2007. Animal Models in Toxicology. Taylor and Francis, Boca Raton. 950 p.
36
Shyong, S. and Jeng, Y., 2007. High Zinc in the erythrocyte plasma membrance of common carp (Cyprinus carpio). Fisheries Science. Vol. 73, pp: 421-428.
37
Soszynski, M.; Filipiak, A.; Bartosz, G. and Gebiek, J., 1996. Effect of amino acid peroxides on the erythrocytes. Free Radic. Biol. Med. Vol. 20, pp: 45-51.
38
Sovobodova, Z.; Vykusova, B. and Machova, J., 1994. Sub lethal chronic effects of pollutants on freshwater fish. Ed. R. Muller ir R. Lloyd. Lugano. pp: 39-52.
39
Svobodova, Z.; Vykusova, B. and Machova, J., 1994. The effects of pollutants on selected hematological and biochemical parameters in fish. In: Sub lethal and chronic effects of pollutants on freshwater fish (Eds.: Müller, R. and Lloyd, R.,). Fishing New Books, London. 324 p.
40
Svecevieius, G., 1999. Acute toxicology of Zinc to common fresh water fishes of Lithonia. Acta Zoologica. Lithonia. Hydrobilogia. Vol. 9, No. 2, pp: 114-128.
41
Taylor, J.C.; Geer, L.N.; Wood, C.M. and Mc Donald, D.G., 2000. Physiological effects of chronic copper exposure to rainbow trout (Oncorhychus mykiss) in hand and soft water, evaluation of chronic indicators. Environ. Toxicol. Chem. Vol. 19, pp: 2298-2308.
42
Tavares-Dias, M. and Moraes, F.R., 2007. Hematological and biochemical reference intervals for farmed channel catfish. Journal of Fish Biology. Vol. 71, pp: 383-388.
43
Tishinova, V. and IIieva, N., 1994. Zoology. Vol. 85, pp: 98-109 (in Bulgarian).
44
Tomova, E. and Lliana, V., 2007. Effects of zinc on morphology of erythrocytes and spleen in Carassius gibelio. J. Environ. Biol. Vol. 29, No. 6, pp: 897-902.
45
Van-Duijn. J.R.C., 2000. Diseases of fishes. Narendra publishing House. Delhi, India. 174 p.
46
Vosyliene, M.Z., 1996. Haematological parameters of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) during short-term exposure to copper. Ekologija. Vol. 3, pp: 12-18.
47
World health organization (W.H.O). 2000. Gide line fur drinking water quality, Recommendation, W.H.O. Geneva, Switzerland. Vol. 1, 130 p.
48
Weatherly, A.H.; Lace, P.S. and Stural, P.L., 1998. Zinc pollution and ecology of environment. Toxical-chem. Vol. 18, No. 10, pp: 225-230.
49
Witeska, M., 2005. Stress in fish hematological and immunological effects of heavy metals. Electronic Journal of Ichthyology. Vol. 1, pp: 35-41.
50
Wunderlin, D.; Diaz, M.; Ame, M.V.; Pesce, S.; Hued, A. and Bistoni, M.A., 2001. Pattern recognition techniques for the evaluation of spatial and temporal variations in water quality. A case study: Suquia river basin (Cordoba, Argentina). Water Research. Vol. 35, pp: 2881-2894.
51
Xiaoyun, Z.; Mingyun, L.; Khalid, A. and Weinmin, W., 2009. Comparative of hematology and serum biochemistry of cultured and wild Dojo loach, Misgrurnus anguillicadatus. Fish Physiology Biochemistry. Vol. 35, pp: 435-441.
52
Yilmaz, M.; Selami, A. and Ferhat, D., 2011. Metal accumulation in sediment, water, and freshwater fish in a Dam Lake. Toxicological & Environmental Chemistry. Vol. 94, pp: 49-55.
53
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تغییرات هماتولوژی و شاخص های استرس ماهی فیتوفاگ (Hypophthalmichthys molitrix) در مواجهه با غلظت های کشنده و تحت کشنده کلرید سرب
امروزه پیشرفت صنعت آبزی پروری، لزوم گسترش تشخیص سلامت ماهیان را بیش از پیش نمایان می سازد. شاخص های خونی بیومارکرهای مفیدی هستند که به منظور ارزیابی شرایط فیزیولوژیک آبزیان در پاسخ به استرس آلاینده ها به کار رفته و تغییرات درونی بدن ماهی را دقیقاً منعکس می کنند. این تحقیق با هدف بررسی تغییرات هماتولوژی و شاخصهای استرس ماهی فیتوفاگ در مواجهه با غلظتهای کشنده و تحت کشنده کلرید سرب انجام گرفت. در انجام پژوهش حاضر ابتدا غلظت نیمه کشنده (LC50) فلز سرب به میزان 38/09 میلی گرم در لیتر از طریق محاسبه تلفات ماهیان کپور نقره ای در معرض کلرید سرب در زمانهای 24، 48، 72 و 96 ساعت با کمک آنالیز پروبیت تعیین شد. سپس با طراحی آزمایش جداگانه ای، کپور ماهیان نقره ای به مدت 96 ساعت در معرض تیمار کشنده و تحت کشنده کلرید سرب (10 و 50 درصد LC50 96h) و نیز یک گروه شاهد هر کدام با 3 تکرار قرار داده شد. پس از خونگیری، شاخص های هماتولوژی و بیوشیمیایی نظیر هماتوکریت، هموگلوبین، شاخص های گلبول قرمز، تعداد کل گلبول های سفید و قرمز و شمارش افتراقی گلبول های سفید، گلوکز، کورتیزول و پروتئین کل مورد بررسی قرار گرفت. نتایج کاهش معنیدار گلبول قرمز، درصد هماتوکریت، هموگلوبین و همچنین افزایش میزان نوتروفیل را با افزایش میزان غلظت سم نشان داد. هم چنین برای شاخص های بیوشیمیایی نیز افزایش معنی دار میزان گلوکز وکورتیزول و نیز کاهش معنی دار پروتئین کل مشاهده شد. به طورکلی می توان بیان نمود که فلز سنگین سرب حتی در غلظت های تحت کشنده نیز آسیب های شدید فیزیولوژیک ایجاد نموده و منجر به القای استرس ثانویه می گردد.
http://www.aejournal.ir/article_106999_ef1943178d58f58038acf5b3e531933e.pdf
2020-06-21
251
260
10.22034/aej.2020.106999
آلودگی
هماتولوژی
سرب (Pb)
فیتوفاگ
فلزات سنگین
سعید
شهبازی ناصرآباد
saeid.shahbazi@ut.ac.ir
1
باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد یاسوج، دانشگاه آزاد اسلامی، یاسوج، ایران
LEAD_AUTHOR
سید علی اکبر
هدایتی
hedayati@gau.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
Adeyemo, O.K., 2007. Haematological profile of Clarias gariepinus (Burchell, 1822) exposed to lead. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 7, No. 2, pp: 163-169.
1
Almeida, J.A.; Novelli, E.L.B.; Silva, M.D.P. and Júnior, R.A., 2001. Environmental cadmium exposure and metabolic responses of the Nile tilapia, Oreochromis niloticus. Environmental Pollution. Vol. 114, No. 2, pp: 169-175.
2
Andresen, B.D., 1986. Textbook of clinical chemistry (Vol. 486). Tietz, N.W., (ed.), Philadelphia et al.: Saunders. 146 p.
3
Banaee, M.; Mirvagefei, A.R.; Rafei, G.R. and Amiri, B.M., 2008. Effect of sub-lethal diazinon concentrations on blood plasma biochemistry. International Journal of Environmental Research. Vol. 2, pp: 189-198.
4
Ciftci, N.; Cicik, B.; Erdem, C. and Ay, O., 2008. Effects of lead concentrations on sera parameters and hematocrit levels in Anguilla anguilla (Linnaeus, 1758). Journal of Fisheries Sciences. Vol. 2, pp: 616-622.
5
Cogun, H.Y. and Şahin, M., 2013. The effect of lead and zeolite on hematological and some biochemical parameters in Nile fish (Oreochromis niloticus). Current Progress Biological Research. Vol. 12, pp: 277-286.
6
Das, P.C.; Ayyappan, S. and Jena J.K., 2006. Haematological changes in the three Indian major carps, Catla catla (Hamilton), Labeo rohita (Hamilton) and Cirrhinus mrigala (Hamilton) exposed to acidic and alkaline water pH. Aquaculture. Vol. 256, pp: 80-87.
7
Drobkin, D.R., 1945. Crystallographic and optical properties of human hemoglobin: a proposal for the standardization of hemoglobin. American Journal of the Medical Sciences. Vol. 209, pp: 268-270.
8
Engelsma, M.Y.; Hougee, S.; Nap, D; Hofenk, M.; Rombout, J.H.; van Muiswinkel, W.B. and Erburg-van Kemenade, B.L., 2003. Multiple acute temperature stress affects leucocyte populations and antibody responses in common carp, Cyprinus carpio L. Fish & shellfish immunology. Vol. 15, No. 5, pp: 397-410.
9
Evans, G.O., 2008. Animal hematotoxicology: a practical guide for toxicologists and biomedical researchers. CRC Press. 224 p.
10
Fantin, A.M.B.; Trevisan, P.; Pederzoli, A. and Bergomi, M., 1988. Effects of acute experimental pollution by lead on some haematological parameters in Carassius carassius (L.) var. auratus. Italian Journal of Zoology. Vol. 55, pp: 251-255.
11
Fırat, O.; Cogun, H.Y.; Yüzereroğlu, T.A.; Gök, G.; Fırat, O.; Kargin, F. and Kötemen, Y.A., 2001. Comparative study on the effects of a pesticide (cypermethrin) and two metals (copper, lead) to serum biochemistry of Nile tilapia, Oreochromis niloticus. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 37, No. 3, pp: 657-666.
12
Fırat, O. and Kargın, F., 2010. Individual and combined effects of heavy metals on serum biochemistry of Nile tilapia Oreochromis niloticus. Archives of environmental contamination and toxicology. Vol. 58, No. 1, pp: 151-157.
13
Gagnon, A.; Jumarie, C. and Hontela, A., 2006. Effects of Cu on plasma cortisol and cortisol secretion by adrenocortical cells of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquatic toxicology. Vol. 78, No. 1, pp: 59-65.
14
Hodson, P.V.; Blunt, B.R.; Spry, D.J. and Austen, K., 1977. Evaluation of erythrocyte δ-amino levulinic acid dehydratase activity as a short-term indicator in fish of a harmful exposure to lead. Journal of the Fisheries Board of Canada. Vol. 34, No. 4, pp: 501-508.
15
Hodson, P.V.; Whittle, D.M.; Wong, P.T.; Borgmann, U. and Thomas, R.L., 1984. Lead contamination of the Great Lakes and its potential effects on aquatic biota. In: Nriagu, J.O. Simmons, M.S. (ed.), Toxic contaminants in the Great Lakes. John Wiley and Sons, Indianapolis, In. Advances in Environmental Science and Technology. 527 p.
16
Holcombe, G.W.; Benoit, D.A.; Leonard, E.N. and McKim, J.M., 1976. Long-term effects of lead exposure on three generations of brook trout (Salvelinus fontinalis). Journal of the Fisheries Board of Canada. Vol. 33, No. 8, pp: 1731-1741.
17
Javed, M. and Usmani, N., 2015. Impact of heavy metal toxicity on hematology and glycogen status of fish: a review. Proceedings of the National Academy of Sciences, India Section B: Biological Sciences. Vol. 85, No. 4, pp: 889-900.
18
Kaya, H.; Akbulut, M. and Yılmaz, S., 2015. Influence of sublethal lead concentrations on glucose, serum enzymes and ion levels in tilapia (Oreochromis mossambicus). In Proceedings of the 7th International Conference on Information and Communication Technologies in Agriculture. Food and Environment. pp: 858-866.
19
Lal Shah, S., 2010. Hematological changes in Tinca tinca after exposure to lethal and sublethal doses of Mercury, Cadmium and Lead. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 9, No. 3, pp: 434-443.
20
Latif, A.; Khalid, M. and Ali, M., 2014. Evaluation of Toxic Stress of Copper Sulphate and Lead Nitrate on Hematological and Serum Biochemical Characteristics of Freshwater Cyprinid (Labeo rohita). International journal of current engineering and technology. Vol. 4, pp: 366-372.
21
Malik, N.; Biswas, A.K.; Qureshi, T.A.; Borana, K. and Virha, R., 2010. Bioaccumulation of heavy metals in fish tissues of a freshwater lake of Bhopal. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 160, pp: 267-276.
22
Martinez, C.B.R.; Nagae, M.Y.; Zaia, C.T.B.V. and Zaia, D.A.M., 2004. Acute morphological and physiological effects of lead in the neotropical fish Prochilodus lineatus. Brazilian Journal of Biology. Vol. 64, No. 4, pp: 797-807.
23
Martins, J.; Oliva, T.L. and Vasconcelos, V., 2007. Assays with Daphnia magna and Danio rerio as alert systems in aquatic toxicology. Environment International. Vol. 33, No. 3, pp: 414-425.
24
Mohiseni, M.; Asayesh, S.; Shafiee Bazarnoie, S.; Mohseni, F.; Moradi, N.; Matouri, M. and Mirzaee, N., 2016. Biochemical Alteration Induced by Cadmium and Lead in Common Carp via an Experimental Food Chain. Iranian Journal of Toxicology. Vol. 10, No. 4, pp: 25-32.
25
Neff, J.M., 1985. Use of biochemical measurements to detect pollutant-mediated damage to fish. In Aquatic Toxicology and Hazard Assessment: Seventh Symposium. ASTM International.
26
Oh, H.S.; Lee, S.K.; Kim, Y.H. and Roh, J.K., 1991. Mechanism of selective toxicity of diazinon to killfish (Oryzias latipes) and loach (Misgurnus Anguillicaudatus). Aquatic Toxicology and Risk Assesment. Vol. 14, pp: 343-353.
27
Oladimeji, A.A. and Offem, B.O., 1989. Toxicity of lead to Clarias lazera, Oreochromis niloticus, Chironomus tentans and Benacus sp. Water, Air, and Soil Pollution. Vol. 44, pp: 191-201.
28
Olaifa, F.E.; Olaifa, A.K. and Lewis, O.O., 2003. Toxic stress of lead on Clarias gariepinus (African catfish) fingerlings. African Journal of Biomedical Research. Vol. 6, No. 2, pp: 101-104.
29
Ololade, I.A. and Oginni, O., 2010. Toxic stress and hematological effects of nickel on African catfish, Clarias gariepinus, fingerlings. Journal of environmental chemistry and Ecotoxicology. Vol. 2, No. 2, pp: 014-019.
30
Remyla, S.R.; Ramesh, M.; Sajwan, K.S. and Kumar, K.S., 2008. Influence of zinc on cadmium induced haematological and biochemical responses in a freshwater teleost fish Catla catla. Fish physiology and biochemistry. Vol. 34, No. 2, pp: 169-174.
31
Rose, W.L.; Nisbet, R.M.; Green, P.G.; Norris, S.; Fan, T.; Smith, E.H.; Cherr, G.N. and Anderson, S.L., 2006. Using an integrated approach to link biomarker responses and physiological stress to growth impairment of cadmium exposed larval topsmelt. Aquatic toxicology. Vol. 80, No. 3, pp: 298-308.
32
Ruane, N.M.; Huisman, E.A. and Komen, J., 2001. Plasma cortisol and metabolite level profiles in two isogenic strains of common carp during confinement. Journal of fish biology. Vol. 59, No. 1, pp: 1-12.
33
Sastry, K.V. and Rao, D.R., 1984. Effect of mercuric chloride on some biochemical and physiological parameters of the freshwater murrel, Channa punctatus. Environmental Research. Vol. 34, No. 2, pp: 343-350.
34
Shahbazi, S.; Moëzzi, F.; Poorbagher, H. and Rostamian, N., 2015. Effects of Malathion Acute Toxicity on Behavioral and Haematological Parameters in Capoeta damascina (Cypriniformes: Cyprinidae). Journal of Chemical Health Risks. Vol. 5, No. 3, pp: 209-220.
35
Shaluei, F.; Hedayati, A.; Jahanbakhshi, A. and Baghfalaki, M., 2012. Physiological responses of great sturgeon (Huso huso) to different concentrations of 2-phenoxyethanol as an anesthetic. Fish physiology and biochemistry. Vol. 38, No. 6, pp: 1627-1634.
36
Shaluei, F.; Hedayati, A.; Jahanbakhshi, A.; Kolangi, H. and Fotovat, M., 2013. Effect of subacute exposure to silver nanoparticle on some hematological and plasma biochemical indices in silver carp (Hypophthalmichthys molitrix). Human & experimental toxicology. Vol. 32, No. 12, pp: 1270-1277.
37
Shariati, F.; Sari, A.E.; Mashinchian, A. and Pourkazemi, M., 2011. Metallothionein as potential biomarker of cadmium exposure in Persian sturgeon (Acipenser persicus). Biological trace element research. Vol. 143, No. 1, pp: 281-291.
38
Sprague, J.B., 1971. Measurement of pollutant toxicity to fish-III: Sublethal effects and safe concentrations. Water Research. Vol. 5, No. 6, pp: 245-266.
39
Stoskopf, M.K., 1993. Clinical pathology of Carp, Gold fish and Koi in Fish Medicine. In: M.K. Stoskopf. Eds. W.B. Sounders Company. Philadelphia, USA. pp: 450-453.
40
Thrall, M.A.; Weiser, G.; Allison, R. and Campbell, T.W., 2012. Veterinary hematology and clinical chemistry. John Wiley & Sons. 776 p.
41
Van der Oost, R.; Beyer, J. and Vermeulen, N.P.E., 2003. Fish bioaccumulation and biomarkers in environmental risk assessment: a review. Environmental Toxicology and Pharmacology. Vol. 13, No. 2, pp: 57-149.
42
Vani, T.; Saharan, N.; Mukherjee, S.C.; Ranjan, R.; Kumar, R. and Brahmchari, R.K., 2001. Deltamethrin induced alterations of hematological and biochemical parameters in fingerlings of Catla catla (Ham.) and their amelioration by dietary supplement of vitamin C. Pesticide Biochemistry and Physiology. Vol. 101, No. 1, pp: 16-20.
43
Verma, S.R.; Rani, S. and Dalela, R.C., 1982. Indicators of stress induced by pesticides in Mystus vittatus: haematological parameters. Indian Journal of Environmental Health. Vol. 24, pp: 58-64.
44
Vinodhini, R. and Narayanan, M., 2008. Bioaccumulation of heavy metals in organs of fresh water fish Cyprinus carpio (Common carp). International Journal of Environmental Science & Technology. Vol. 5, No. 2, pp: 179-182.
45
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی آلودگی های انگلی در ماهی کاراس (Carassius gibelio) دریاچه نئور اردبیل (در سال 1395)
در این مطالعه، آلودگی های انگلی ماهی کاراس نقره ای (Carassius gibelio (Bloch, 1782 دریاچه نئور اردبیل مورد بررسی قرار گرفت. نمونه برداری از 128 عدد ماهی، طی بهار تا پاییز سال 1395 و به صورت هر فصل یک بار انجام شد. به دلیل سرمای شدید و یخ بستن سطح دریاچه در زمستان، امکان صید و نمونه برداری در این فصل وجود نداشت. دامنه سنی نمونه ها بین 1 تا 3 سالو از نظر جنسی، 108 عدد ماده و 20 عدد نر بودند. میانگین (±انحراف معیار) وزن و طول ماهیان به ترتیب 77/71±91/56 گرم و 15±6/54 سانتی متر به دست آمد. در نتیجه این بررسی، ترماتود منوژن داکتیلوژیروس انکوراتوس (Dactylogyrus anchoratus) در آبشش ماهیان مورد مطالعه جداسازی و شناسایی شد. شیوع این انگل در دو فصل بهار و تابستان به ترتیب 5/88 و 6/57 درصد و دامنه تعداد آن 1 عدد در هر فصل بود. این اولین گزارش از آلودگی ماهی کاراس دریاچه نئور به انگل داکتیلوژیروس آنکوراتوس است. بررسی مجدد وضعیت آلودگی ماهیان دریاچه، پیش از هرگونه فعالیت آبزی پروری در آن ضروری است.
http://www.aejournal.ir/article_107032_66de5757e0154cfa0b07ddecf20c9abc.pdf
2020-06-21
261
266
10.22034/aej.2020.107032
اردبیل
دریاچه نئور
آلودگی انگلی
کاراس
سید فخرالدین
میر هاشمی نسب
mirhashemi_v@yahoo.com
1
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندر انزلی، ایران
LEAD_AUTHOR
جواد
دقیق روحی
javad_daghigh@yahoo.com
2
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندر انزلی، ایران
AUTHOR
منیره
فئید
m_faeed@yahoo.com
3
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندر انزلی، ایران
AUTHOR
محدث
قاسمی
mohades@yahoo.com
4
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندر انزلی، ایران
AUTHOR
مهرداد
اصغرنیا
mehrdad_asgharnia@yahoo.com
5
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندر انزلی، ایران
AUTHOR
اسدزاده منجیلی، ع.؛ مخیر ، ب. و جلالی جعفری، ب.، 1379. بررسی بهداشتی و بیماری های انگلی خارجی کپور ماهیان پرورشی در سیستم پن کالچر تالاب انزلی. مجله پژوهش و سازندگی. دوره 13، شماره 2، صفحات 96 تا 102.
1
اسلامی، ع.، 1377. کرم شناسی. جلد اول، ترماتودها. انتشارات دانشگاه تهران. 365 صفحه.
2
پازوکی، ج. و معصومیان، م.، 1389. انگل شناسی ماهیان. دانشگاه علمی کاربردی جهادکشاورزی. 166 صفحه.
3
جلالی جعفری، ب.، 1377. انگل ها و بیماری های انگلی ماهیان آب شیرین ایران. معاونت تکثیر و پرورش آبزیان، اداره کل آموزش و ترویج. 564 صفحه.
4
خارا، ح.؛ نظامی، ش.؛ ستاری، م.؛ میرهاشمی نسب، س.ف. و موسوی، س.ع.، 1386. بررسی آلودگی ماهیان اقتصادی تالاب بوجاق کیاشهر به انگل دیپلوستوموم. مجله زیست شناسی ایران. جلد 20 ، شماره 4، صفحات 418 تا 429.
5
دقیق روحی، ج.؛ میرهاشمی نسب، س.ف.؛ ستاری، م.؛ معصومیان، م.؛ نظام آبادی، ح.؛ اصغرنیا، م.؛ قربانپور، ن.؛ نهرور، م.ر.؛ روفچاهی، ر.؛ رمضانی عاقله، ب.؛ موسوی کومله، ستاری، م.؛ فرامرزی، ن. و روستایی، م.، 1374. بررسی نوع و میزان آلودگی های انگلی ماهیان تالاب انزلی. گزارش نهایی طرح تحقیقاتی. آموزشکده کشاورزی و منابع طبیعی صومعه سرا، دانشگاه تهران. 52 صفحه.
6
کیوانی، ی.؛ نصری، م .؛ عباسی، ک. و عبدلی، ا.، 1395. اطلس ماهیان آب های داخلی ایران. تهران، جهاد دانشگاهی، واحد استان البرز (خوارزمی). 218 صفحه.
7
مددی، ع.؛ رضایی مقدم، م.ح. و رجایی، ع.ح.، 1383. پژوهشی در تکامل ژئومورفولوژی دریاچه نئور، شمال غرب ایران منطقه اردبیل. فصلنامه تحقیقات جغرافیایی، مجله دانشگاه امیرکبیر. شماره 74، صفحات 92 تا 103.
8
موسوی ندوشن، ر.؛ سامان پژوه، م.؛ عمادی، ح. و فاطمی، س.م. ر.، 1390. ساختار جمعیت موجودات ماکروبنتوز در دریاچه نئور اردبیل. مجله علمی شیلات ایران. سال 20، شماره 3، صفحات 129 تا 142.
9
میرهاشمی نسب، س.ف. و پازوکی، ج.، 1381. بررسی آلودگی ماهیان دریاجه سد مهاباد به انگل های سخت پوست. مجله علمی شیلات ایران. شماره 4، صفحات 135 تا 148.
10
میرهاشمی نسب، س.ف.، 1386. انگل های جدا شده از ماهیان دریاچه سدماکو و مهاباد. گزارش نهایی پروژه. پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 45 صفحه.
11
Bagenal, T.B., 1978. Methods for assessment of fish production in freshwater. Blackwell Scientific. 365 p.
12
Barber, I.; Hoare, D. and Krause, J., 2000. Effects of parasites on fish behavior: a review and evolutionary perspective. Reviews in Fish Biology and Fisheries. pp: 131-165.
13
Bauer, O.N., 1987. Epizootiological significance of Monogeneans.in: Skarlato, O.A. Investigation of monogeneas in U.S.S.R, Oxonian, New Delhi. pp: 137- 142.
14
Berg, L.S., 1949. Freshwater fishes of the U.S.S.R and adjacent countries. Izdatelstvo Akademic Nauk. S.S.S.R. Moskva. Leningrad. pp: 385-390.
15
Borisov, E.V., 2013. Represantatives of dactylogyridae family of the monogenea class in golden fish (Carassius auratus auratus) imported in Bulgaria from Singapore. Bulgarian Journal of Agricultural Science. Vol. 19, No. 2, pp: 237-242.
16
Bush, A.O.; Lafferty, K.D.; Lotz, J.M.; Shostak, A.W., 1997. Parasitology meets ecology on its own terms: Margolis et al. revisited. J Parasitol. pp: 575-583.
17
Bychovskya- Pavlovskaya, I.E.; Gussev, A.V.; Dubinina, M.N.; Isyumova, N.A.; Smironova, T.S.; Sokolovskaya, I.L.; Shetin, G.A. and Epshtein, V.M., 1964. Key to the parasites of freshwater fish of the U.S.S.R. Jerusalem: Israel Program for Scientific Translation, IPST Cat. No. 1136, 919 p.
18
Çolak, H.S., 2013. Metazoan parasites of fish species from Lake Sığırcı (Edirne, Turkey). Turkish Journal of Veterinary and Animal Sciences. Vol. 37, pp: 200-205.
19
Daghigh Roohi, J.; Sattari, M.; Nezamabadi, H. and Ghorbanpour, N., 2016. Occurrence and intensity of parasites in Prussian carp, Carassius gibelio from Anzali Wetland, Southwest Caspian Sea. Iranian Journal of Fisheries Sciences. pp: 276-288.
20
Demir, S. and Karakişi, H., 2016. Metazoan Parasite Fauna of the Prussian carp, Carassius gibelio (Bloch, 1782) (Cyprinidae), from Marmara Lake, Turkey. Acta Zoologivca Bulgarica. Vol. 68, pp: 265-268.
21
Dogiel, V.A., 1961. Ecology of parasites of freshwater fishes, in: Dogiel, Petrushevski, V.A. and Polianski, G.K. Y.U.I. Parasitology of fishes, Boyed. London. pp: 1-47.
22
Karimpoor, M. and Haghighi, D., 1994. The hunting, the fishing and some of their biological characteristics of Carrasius giblio. Annual report 1371 and 1372. Fisheries Research Center Gilan Province, Bandare Anzali. pp: 4-26.
23
Khurshid, I.; Ahmad, F. and Ahmad, T., 20.13. Parasitic distribution in relation to gender, season and length of fish hosts in Shallabugh wetland. International Journal of Scientific & Engineering Research. Vol. 4, pp: 1083-1091.
24
Knipes, A. and Yanovi,K., 2009. Community structure and seasonal dynamics of Dactylogyrus spp.(Monogenea) on the fathead minnow (Pimephales promelas) from the salt valley watershed, Lancaster county, Nebraska. J. Parasitology. Vol. 69, No. 2, pp: 217-218.
25
Molnar, K. and Jalali, B., 1992. Further monogeneans from Iranian freshwater fishes. Acta Veterinary, Hungarica. Vol. 5, pp: 55-61.
26
Nikolsky, G.V., 1969. Theory of fish population Dynamics; Oliver and Boyd. Edinburg; England. 323 p.
27
Ogawa, K., 2002. Impact of diclidophorid monogenean infections on fisheries in Japan. Int. Journal of Parasitology. Vol. 32, No. 3, pp: 373-380.
28
Paperna, I., 1963. Some observation on the biology and ecology of D. vastator in Palestine, Bamidgeh. pp: 8- 28.
29
Stoskopf, M.K., 1993. Fish Medicine, W.B. Saunders, Philadelphia, U.S. Vol. 11, pp: 52-63.
30
Veer, V.d. and Nentwig, W., 2015. Environmental and economic impact assessment of alien and invasive fish species in Europe using the generic impact scoring system. Ecology of Freshwater fish. Vol. 24, pp: 646-656.
31
www.makanbin.com/ardabil/place.
32
ORIGINAL_ARTICLE
اثر افزودنی خوراکی فایتوژنیک دایجستروم پی.ای.پی. بر عملکرد رشد و برخی صفات دستگاه گوارش گورامی بزرگ جثه (Osphronemus goramy)
دایجسترم پی.ای.پی. یک مخلوط تجاری استانداردسازی شده از ترکیبات فایتوژنیک (شامل کارواکرول، آنتول و لیمونن) و ترکیبات پریبیوتیکی (شامل فروکتوالیگوساکاریدها) بوده که عملکرد اصلی آن تثبیت فلور میکروبی مفید دستگاه گوارش آبزیان میباشد. مطالعه حاضر با هدف بررسی اثر سطوح مختلف افزودنی خوراکی دایجستروم پی.ای.پی. بر برخی خصوصیات رشد مورفولوژی روده و فلور میکروبی روده ماهی گورامی بزرگ جثه انجام گردید. برای این تحقیق، سه تیمار آزمایشی با سه تکرار حاوی مقادیر 5، 10 و 15 میلی گرم دایجستروم پی.ای.پی. در کیلوگرم خوراک طراحی شدند و جیرة فاقد افزودنی، به عنوان تیمار شاهد درنظر گرفته شد. بچه ماهی ها (میانگین وزن اولیه 0/2±3/1 گرم) طی یک دوره 60 روزه توسط جیره های آزمایشی، مورد تغذیه قرار گرفتند. در پایان دوره نیز برخی صفات دستگاه گوارش (شاخص امعاء و احشاء، جمعیت باکتری های لاکتوباسیل روده، طول و عرض میکروپرزهای روده) سنجیده شد. نتایج نشان دادند که افزودن دایجستروم، سبب افزایش وزن نهایی، نرخ رشد ویژه و کاهش ضریب تبدیل غذا در بچه ماهیان نسبت به تیمار شاهد گردید (0/05>P)، به طوری که که بیش ترین وزن نهایی بدن (22/67 گرم) مربوط به تیمار 15 درصد فایتوژنیک دایجستروم و کم ترین مقدار (10/13 گرم) مربوط به تیمار شاهد بود (0/05>P). مقایسه میانگین شاخص امعاء و احشا، بیانگر عدم وجود اختلاف معنی دار میان تیمارهای مختلف بود (0/05<P). هم چنین، بیش ترین تعداد باکتری های لاکتوباسیل در تیمار 15 درصد و کم ترین مقدار در تیمار شاهد مشاهده گردید. بالاترین نتایج افزایش طول میکروپرزهای روده در تیمارهای 10 (963 میکرومتر) و 15 (962 میکرومتر) درصد مکمل دایجستروم به دست آمد (0/05>P). نتایج این تحقیق نشان داد که افزودن خوراکی دایجستروم پی.ای.پی. به مقدار 15 درصد در جیره غذایی تأثیر مثبت معنی داری بر فاکتورهای رشد و فلور میکروبی دستگاه گوارش ماهی گورامی بزرگ جثه خواهد داشت.
http://www.aejournal.ir/article_107085_fdea72f79fc02bc1a449d3b7a975ff80.pdf
2020-06-21
267
274
10.22034/aej.2020.107085
گورامی بزرگ جثه
رشد
فایتوژنیک
دایجستروم پی. ای. پی
مورفولوژی روده
بهنام
کریمی فر
behnam_karimifar@yahoo.com
1
گروه شیلات، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
حسین
عبدالحی
hossein_abdolhay@yahoo.com
2
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
فلورا
محمدی زاده
fmohammadi13@gmail.com
3
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
مهدی
شمسایی مهرجان
drshamsaie@gmail.com
4
گروه شیلات، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
سید پژمان
حسینی شکرابی
hosseini@srbiau.ac.ir
5
گروه شیلات، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
بیشه بان، م.ع.؛ زمینی، ع. و نصری تجن، م.، 1394. تعیین شاخص های رشد وایمنی بچه ماهی استرلیاد (Acipenser ruthenus) تغذیه شده با مکمل غذایی دایجستروم. مجله بهره برداری و پرورش آبزیان دانشگاه گرگان. دوره 4. شماره 2، صفحات 41 تا 51.
1
بیشه بان، م.ع.؛ زمینی، ع. و نصری تجن،م.، 1395. تعیین برخی شاخص های خونی و ایمنی ماهی استرلیاد (Acipenser ruthenus) تغذیه شده با سطوح مختلف افزودنی گیاهی کارواکرول، آنتول و لیمونن. مجله زیست شناسی دریا واحد دانشگاه آزاد اهواز ایران. دوره 8، شماره 30، صفحات 15 تا 26.
2
جانمحمدی، ح.؛ تقی زاده، ا. و مالکی مقدم، م.، 1388. تأثیر جایگزینی آرد ماهی با پودر ضایعات کشتارگاهی طیور بر رشد و صفات لاشه در تغذیه ماهی قزل آلای رنگین کمان. مجله پژوهش های علوم دامی. جلد 1، شماره 2، صفحات 125 تا 136.
3
دفاعی، س.؛ فلاحتکار، ب. و عفت پناه، ا.، 1395. تأثیر دایجستروم P.E.P بر رشد و برخی شاخص های خونی در بچه فیل ماهی (Huso huso). علوم و فنون شیلات. دوره ۵، شماره 1، صفحات ۸۳ تا ۹۵.
4
طاعتی، ر. و تعادلی، ح.، 1394. تعیین عملکرد رشد و برخی پارامترهای خونی و ایمنی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) تغذیه شده با سطوح مختلف افزودنی گیاهی کارواکرول، آنتول و لیمونن. مجله زیست شناسی دریا واحد دانشگاه آزاد اهواز ایران. دوره 6، شماره 25، صفحات 35 تا 44.
5
علیشاهی، م.؛ مصباح، م.؛ نامجویان، ف.؛ سبزواری زاده، م. و راضی جلالی، م.، 1391. مقایسه اثر برخی محرک های ایمنی شیمیایی و گیاهی در ماهی اسکار (Astronotus ocellatus). مجله دامپزشکی ایران. دوره 8، شماره 2، صفحات 58 تا 68.
6
علیشاهی، م.؛ سلطانی، م.؛ مصباح، م. و زرگر، ا.، 1391. تأثیر تحریک ایمنی و رشد عصاره های گیاهی سرخارگل، کندر و آویشن در ماهی کپورمعمولی، مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 67، صفحات 127 تا 133.
7
فریدپاک، ف.، 1365. تکثیر مصنوعی و پرورش ماهیان گرمابی. انتشارات وزارت جهاد کشاورزی، تهران. 370 صفحه.
8
Ashraf, M.A. and Goda, S., 2008. Effect of dietary ginseng herb (Ginsana-g115) supplementation on growth, feed utilization, and hematological indices of Nile tilapia, Oreochromis niloticus (L.), fingerlings. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 39, pp: 205-214.
9
Akhter, N.; Wu, B.; Memon, A.M. and Mohsin, M., 2015. Probiotics and prebiotics associated with aquaculture: a review. Fish and shellfish immunology. Vol. 45, No. 2, pp: 733-741.
10
Ayokanmi dada, A., 2012. Effects of herbal growth promoter feed additive in fish meal on the perfor-mance of Nile Tilapia (Oreochromis niloticus). The Egyptian Academic Journal of Biological Sciences. Vol. 4, No.1, pp: 111-117.
11
Bello, O.S.; Emikpe, B.O. and Olaifa, F.E., 2012. The body weight changes and gut morphometry of clariasgariepinus juveniles on feeds supple-mented with walnut (Tetracarpidium conophorum) leaf and onion (Allium cepa) bulb residues. International Journal of Morphology. Vol. 30, No. 4, pp: 253-257.
12
Borgeson, T.L.; Racz, V.J.; Wilkie, D.C.; White, L.J. and Drew, M.D., 2006. Effect of replacing fishmeal and oil with simple or complex mixtures of vegetable ingredients in diets fed to Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture Nutrition. Vol. 12, No. 2, pp: 141-149.
13
Hernandez, F.; Madrid, J.; Garcia, V.; Orengo, J. and Megias, M.D., 2004. Influence of two plant extracts on broilers performance, digestibility, and digestive organ size. Poultry Science. Vol. 83, No. 2, pp: 169-174.
14
Hevroy, E.M.; Espe, M.; Waagbø, R.; Sandnes, K.; Ruud, M. and Hemre, G.I., 2005. Nutrient utilization in Atlantic salmon (Salmo salar L.) fed increased levels of fish protein hydrolysate during a period of fast growth. Aquaculture Nutrition. Vol. 11, No.4, pp: 301-313.
15
Hundal, H.S. and Taylor, P.M., 2009. Amino acid transceptors: gate keepers of nutrient exchange and regulators of nutrient signaling. American Journal of Physiology-Endocrinology and Metabolism. Vol. 29, No.4, pp: 603-613.
16
Kestemont, P.; Xueliang, X.; Hamza, N.; Maboudou, J. and Toko, I.I., 2007. Effect of weaning age and diet on pikeperch larviculture. Aquaculture. Vol. 264, No. 4, pp: 197-204.
17
Kim, J.M.; Marshall, M.R.; Cornell, J.A. and Wei, C.I., 1995. Antibacterial activity of carvacrol, citral, and geraniol against Salmonella typhimurium in culture medium and on fish cubes. Journal of Food Science. Vol. 60, No. 6, pp: 1364-1368.
18
Kroismayr, A.; Schedle, K.; Sehm, J.; Pfaffl, M.W.; Plitzner, C.; Foissy, H. and Windisch, W., 2008. Effects of antimicrobial feed additives on gut microbiology and blood parameters of weaned piglets. Bodenkultur. Vol. 59, No. 59, pp: 111-120.
19
Ringø, E.; Zhou, Z.; He, S. and Olsen, R.E., 2014. Effect of stress on intestinal microbiota of Arctic charr, Atlantic salmon, rainbow trout and Atlantic cod: a review. African journal of Microbiology Research. Vol. 8, No. 7, pp: 609-618.
20
Reisinger, N.; Steiner, T.; Nitsch, S.; Schatzmayr, G. and Applegate, T.J., 2011. Effects of a blend of essential oils on broiler performance and intestinal morphology during coccidial vaccine exposure. Journal of Applied Poultry Research. Vol. 20, No. 3, pp: 272-283.
21
Mountzouris, K.C.; Paraskevas, V.; Tsirtsikos, P.; Palamidi, I.; Steiner, T.; Schatzmayr, G. and Fegeros, K., 2011. Assessment of a phytogenic feed additive effect on broiler growth performance, nutrient digestibility and caecal microflora composition. Animal Feed Science and Technology. Vol. 168, No. 3, pp: 223-231.
22
Ortiz, L.T.; Rebolé, A.; Velasco, S.; Rodríguez, M.L.; Treviño, J.; Tejedor, J.L. and Alzueta, C., 2013. Effects of inulin and fructooligosaccharides on growth performance, body chemical composition and intestinal microbiota of farmed rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture Nutrition, Vol. 19, No. 4, pp: 475-482.
23
Oulad, S.D.E.; Khodabandeh, S.R.; Abediyan, A.H. and Mahmoudi, N.T., 2012. Investigation on Salmo trutta caspius intestinal variations on different levels of dietary nucleotide. Journal of Marine Science and Technology. Vol. 10, No. 2, pp: 37-49.
24
Papageorgiou, G.; Botsoglou, N.; Govaris, A.; Giannenas, I.; Iliadis, S. and Botsoglou, E., 2003. Effect of dietary oregano oil and α‐tocopheryl acetate supplementation on iron‐induced lipid oxidation of turkey breast, thigh, liver and heart tissues. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition. Vol. 87, No. 9‐10, pp: 324-335.
25
Pattnaik, S.; Subramanyam, V.R.; Kole, C.R. and Sahoo, S., 1995. Antibacterial activity of essential oils from Cymbopogon: inter and intra specific differences. Microbiology. Vol. 84, No. 341, pp: 239-245.
26
Peterson, B.C.; Bosworth, B.G.; Li, M.H.; Beltran, R. and Santos, G.A., 2014. Assessment of a phytogenic feed additive (Digestarom P.E.P) on growth performance, processing yield, fillet composition, and survival of channel catfish. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 45, No. 2, pp: 206-212.
27
Qinghui, A.; Kangsen, M.; Chunxiao, Z.; Qingyuan, D.; Beiping, T. and Zhiguo, L., 2004. Effect of dietary vitamin C on growth immune response of Japanese Seabass (Lateolabrax japonicas). Aquaculture. Vol. 242, No. 1-4, pp: 489-500.
28
Taghavi, F.; Tajan, M.N. and Zamini, A.A., 2015. Determination on Growth indices, Blood parameters, Immune responses and Intestine bacterial flora of Bester juvenile fish (Huso huso× Acipenser ruthenus) Fed by Biomin Nutritional supplements. Advances in Bioresearch. Vol. 6, No. 3, pp: 136-143.
29
Tahmasebi-Kohyani, A.; Keyvanshokooh, S.; Nematollahi, A.; Mahmoudi, N. and Pasha-Zanoosi, H., 2008. Effects of dietary nucleotide on growth indices and intestinalmorphology of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Marine Science and Technology. Vol. 1, No. 2, pp: 45-54.
30
Wootan, R.J., 1990. Ecology of teleost fish. Chapman & Hall, London. 458 p.
31
Zhao, Y.; Hu, Y.; Zhou, X.Q.; Zeng, X.Y.; Feng, L.; Liu, Y. and Wu, C.M., 2015. Effects of dietary glutamate supplementation on growth performance, digestive enzyme activities and antioxidant capacity in intestine of grass carp (Ctenopharyngodon idella). Aquaculture Nutrition. Vol. 21, No. 6, pp: 935-941.
32
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر اسانس های آویشن، زیره، دارچین و سیر بر باکتری بیماریزای استرپتوکوکوس اینیایی در محیط برون تنی
اهمیت بیماری آبزیان و هم چنین گزارشات فراوان درخصوص خسارات ناشی از بروز بیماری های عفونی در مزارع پرورش قزل آلای رنگین کمان از یک سو و بروز مقاومت میکروبی در نتیجه استفاده بی رویه از آنتی بیوتیک ها و سایر مواد شیمیایی جهت کنترل و درمان بیماری ها، تقاضا برای درک صحیح مقادیر موثر اسانس ها به عنوان عوامل ضدمیکروبی جایگزین را بیش از پیش اثبات می کند. هدف از انجام مطالعه حاضر بررسی اثر ضدباکتریایی اسانس های آویشن، سیر، دارچین و زیره بر رشد باکتری استرپتوکوکوس اینیایی در محیط برون تنی (In vitro) طی زمان های 24، 48، 72 و 120 ساعت انکوباسیون است. پس از کشت باکتری مورد نظر در محیط کشت اختصاصی، تعداد 3 چاهک در محیط کشت ایجاد و سپس غلظت های 50، 100، 150 و 200 ppm از هر یک از اسانس ها به طور جداگانه به چاهک اضافه و پس از گذشت زمان های فوق قطرهاله عدم رشد باکتری با کولیس اندازه گیری شد. نتایج به دست آمده حاکی از وجود اثر توام معنی دار پارامترهای نوع اسانس، غلظت آن و زمان انکوباسیون است (0/001>P). درخصوص اثر مهارکنندگی بر رشد باکتری استرپتوکوکوس اینیایی بیش ترین اثر بخشی به ترتیب مربوط به اسانس سیر، آویشن، زیره و درنهایت دارچین بوده است که به طور معنی داری با یکدیگر اختلاف داشتند (0/05>P). سریع ترین (پس از 24 ساعت) اثر مهارکنندگی رشد باکتری مربوط به سیر و آویشن بود. در مجموع می توان این گونه نتیجه گیری نمود که اسانس های گیاهی مورد استفاده در این تحقیق، دارای خواص آنتی باکتریال منتهی با درجات و میزان اثربخشی متفاوت هستند.
http://www.aejournal.ir/article_107204_8372eb9c6ba0c750115c816d06e6b60f.pdf
2020-06-21
275
282
10.22034/aej.2020.107204
گیاهان دارویی
اسانس
بیماری های عفونی ماهی
آزمایش برون تنی
سید هادی
سید الحسینی
hadihossini774@yahoo.com
1
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
مازیار
یحیوی
maziar_yahyavi@yahoo.com
2
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
لاله
یزدان پناه گوهرریزی
l_yazdanpanah@yahoo.com
3
مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرمان، ایران
AUTHOR
پژوهی الموتی، م.ح.؛ تاجیک، ح.؛ آخوندزاده، ا.؛ گندمی، ح. و احسانی، ع.، 1391. مطالعه ترکیب شیمیایی و فعالیت ضدمیکروبی اسانس های پونه کوهی و زیره سبز در سوپ. فصلنامه علوم و صنایع غذایی. شماره 36، صفحات 33 تا 45.
1
سنچولی، ن.، 1395. بررسی اثرات ضدباکتریایی اسانس های گیاهی روی برخی از باکتری های پاتوژن ماهی در محیط آزمایشگاهی. نشریه میکروبیولوژی دامپزشکی. شماره 12، صفحات 1 تا 12.
2
شریف روحانی، م.؛ حقیقی، م.؛ عصاییان، ح.، 1390. غلظت نیمه کشنده اسانس آویشن شیرازی در بچه ماهی قزل آلای رنگین کمان پرورشی. مجله علمی شیلات ایران. شماره 20، صفحات 89 تا 96.
3
خانی، س.؛ سروی مغانلو، ک.؛ ایمانی، ا.؛ آق، ن. و رازی. م.، 1395. اثر حفاظتی افزودن اسانس دارچین به جیره غذایی در کاهش سمیت آفلاتوکسین B1 در بچه ماهی قزل آلای رنگین کمان. مجله منابع طبیعی ایران. شماره 69، صفحات 481 تا 495.
4
رومیانی، ل. و رکنی، ن.، 1392. بررسی اثر بازدارندگی اسانس زیره سبز و نیسین بر میزان رشد استرپتوکوکوس اینیایی در فیله ماهی قزل آلا با استفاده از تکنولوژی ترکیبی. فصلنامه علوم و صنایع غذایی. شماره 48، صفحات 37 تا 46.
5
رهنما، م.؛ نوری جنگی، ا. و علیپوراسکندانی، م.، 1397. خاصیت ضدباکتریایی اسانس زیره سبز و نیسین بر جمعیت لیستریا مونوسیتوژن تلقیح شده در گوشت چرخ شده ماهی شیزوتوراکس. مجله دانشگاه علوم پزشکی تربت حیدریه. شماره 6، صفحات 27 تا 31.
6
زرگری، ع.، 1371. گیاهان دارویی. انتشارات دانشگاه تهران. چاپ چهارم، صفحات 1 تا 57.
7
علیشاهی، م.؛ حیدری، م.؛ پشم فروش، م. و نجف زاده، ح.، 1389. مطالعه اثرات ضدباکتریایی برخی عصاره های گیاهی علیه اسـترپتوکوکوس اینیـانی، یرسینیا راکری و آئروموناس هیدروفیلا. مجله دامپزشکی ایران. شماره 6، صفحات 21 تا 30.
8
میرمصطفایی، س.؛ عزیزی، م.؛ بحرینی، م.؛ آروئی، ح. و عروجعلیان، ف.، 1394. تأثیر روش های مختلف خشک کردن بر سرعت کاهش وزن، میزان اسانس و بار میکروبی نعناع فلفلی. مجله پژوهش های تولید گیاهی. شماره 20، صفحات 133 تا 144.
9
معصوم زاده،م.؛ شریف روحانی، م.؛ شناورماسوله، ع.؛ علیزاده، م.؛ جلیل پور،ج. و بازاری مقدم، س.، 1395. تاثیرات ضدباکتریایی عصاره های سیر و آویشن شیرازی بر باکتری آئروموناس هیدروفیلا جداسازی شده از تاس ماهیان پرورشی. نشریه توسعه آبزی پروری. شماره 4، صفحات 125 تا 132.
10
Alsaid, M.; Daud, H.; Bejo, S.K. and Abuseliana, A., 2010. Antimicrobial activities of some culinary spice extracts against Streptococcus agalactiae and its prophylactic uses to prevent streptococcal infection in red hybrid tilapia (Oreochromis sp.). World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 2, No. 6, pp: 532-538.
11
Abdollahzadeh, E.; Rezaei, M. and Hosseini, H., 2014.Antibacterial activity of plant essential oils andextracts: The role of thyme essential oil, nisin,and their combination to control Listeria monocytogenes inoculated in minced fish meat. Journal of Food Control. Vol. 35, No. 1, pp: 177-183.
12
Burt S., 2004. Essential oils: their antibacterial properties and potential applications in foods, a review, International of Food Microbiology. Vol. 4, No. 3, pp: 233-253.
13
Choobkar, N.; Soltani, M.; Ebrahimzadeh Mousavi, H.; Akhonzadeh Basti, A. and Matinfar, A., 2010. Effect of Zataria multiflora Boiss essential oil on the growth of Staphylococcus aureus in the light salted fillets of silver carp (Hypophthalmichthys molitrix). Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 9, No. 3, pp: 352-359.
14
Choudhary, P.R.; Shekhawat, J.S.; Sharma, M.S. and Dashora, J., 2013. Effect of Allium Sativumon experimentally induced hyperlipidemia in guinea pigs. Pakistan Journal of Physiology. Vol. 9, No. 2, pp.: 38-40.
15
Durak, I.; Kavutcu, M.; Aytac, B.; Avci, A.; Devrim, E.; Ozbek, H. and Ozturk, H.S., 2004. Effects of garlic extract consumption on blood lipid and oxidant/antioxidant parameters in humans with high blood cholesterol. The J of Nutritional Biochemistry. Vol. 15, No. 6, pp: 373-377.
16
Ettehad, G.H. and Arab, R., 2007. Evaluation of antibacterial effects of Shiraz oregano essence (Zataria multiflora) on Salmonella typhi and comparing to antibiotics. Research Journal of Bioogical Sciences. Vol. 2, pp: 674-676.
17
Gavanji, S.; Zaker, S.R.; Nejad, Z.G.; Bakhtari, A.; Bidabadi, E.S. and Larki, B., 2015. Comparative efficacy of herbal essences with amphotricin B and ketoconazole on Candida albicans in the in vitro condition. Integrative Medicine Research. Vol. 4, pp: 112-118.
18
Ghasemipirbalouti, A. and Rahimi, E., 2010. Antimicrobial activity of essential oils of three herbs against Listeriamonocytogenes on chicken frankfurters. Acta AgricultureSlovenica Abbreviation. Vol. 95, pp: 219-223.
19
Ghorbani Darabad, S.; Mohsenifar, A.; Yazdanparast, S.R. and Bayat, M., 2015. Antimicrobial Effects of Lavandula angustifolia Mill, Artemisia sieberi Besser, Cinnamomum verum Presl, and Myrtus communis L. Encapsulated Essential Oils Against Prevalent Microorganisms Causing Sinusitis. Thrita. Vol. 4, pp: 2-12.
20
Hong, H.; Luo, Y.; Zhou, Z. and Shen, H., 2012. Effectsof low concentration of salt and sucrose on thequality of bighead carp (Aristichthys nobilis)fillets stored at 4 ºC. Journal of Food Chemistry.Vol. 133, pp: 102-107.
21
Jayanth, K.; Jeyasekaran, G. and Jeya Shakila, R., 2001. Biocontrol of Fish Bacterial Pathogens by the Antagonistic Bacteria isolated from the Coslnl Waters of Gulf of Mannar, India. Bulletin of European Association of Fish Pathologist. Vol. 21, pp: 1218-1222.
22
Madsen, H.L. and Bertelsen, G., 1995. Spices as antioxidants. Trends in Food Science & Technology. Vol. 6, pp: 271-277.
23
Mohagheghzadeh A.; Shams-Ardekani, M.; Ghannadi, A. and Minaeian, M., 2004. Rosmarinicacid from Zataria multiflora tops and in vitrocultures. Fitoterapia. Vol. 75, pp: 315-321.
24
Mushlova, Z.; Schindler, I. and Staeck, W., 2009. Desscription of Andinoacara stalsbergi(Teleostei: Cichlidae: Cichlasomatini) from pacific coastal rivers in Peru/and annotation on the phylogeny of the genus. Vertebrate Zoology. Vol. 59, pp.: 131-141.
25
Osakabe, N.; Yasuda, A.; Natsume, M. and Yoshikawa, T., 2004. Rosmarinic acid inhibitsepidermal inflammatory responses: Anticarcinogenic effect of Perilla frutescens extractin the murine two stage skin model.Carcinogenesi. Vol. 25, pp: 549-557.
26
Parnham, M.J. and Kesselring, K., 1985.Rosmarinic acid. Drug Future. Vol. 10, pp: 756-757.
27
Pinto, M.S.; de Carvalho, A.F.; Santos Pires, A.C.; Campos Souza, A.A; da Silva, P.H.F.; Sobral, D.; de Paula J.C.J. and de Lima Santos, A., 2011. The effects of nisin on Staphylococcus aureus count and the physicochemical properties of Traditional Minas Serro cheese. International Dairy Journal. Vol. 21, pp: 90-96.
28
Roozi, Y.; Moraki, N.; Zoriyeh Zahra, S.J. and Haghighi, M., 2013. Effect of different levels of powdered cinnamon (Cinnamomum zeylanicm) in the diet of fish green terror (Andinocara rivulatus) index, blood glucose and survival. Breeding and Aquaculture Sciences Quarterly. Vol. 1, No. 3, pp: 41-52 (In Persian).
29
Sun, Y.; Sun, L.; Xing, M.; Liu, C. and Hu, Y., 2013. SagE induces highly effective protective immunityagainst Streptococcus iniae mainly through animmunogenic domain in the extracellular region.Journal of Acta Veterinaria Scandinavica. Vol. 1, No. 55, pp: 2-9.
30
Tsironi, T.; Stamatiou, A.; Giannoglou, M.; Velliou, E. and Taoukis, P.S., 2011. Predictive modelling andselection of time temperature integrators formonitoring the shelf life of modified atmospherepacked gilthead sea bream fillets. J of FoodScience and Technology. Vol. 44, pp: 1156-1163.
31
Vazirian, M.; Mohammadi, M.; Farzaei, M.H.; Amin, G. and Amanzadeh, Y., 2015. Chemical composition and antioxidant activity of Origanum vulgare subsp. vulgare essential oil from Iran. Research Journal of Pharmacognosy. Vol. 2, No. 1, pp: 41-46.
32
Yao, J.Y.; Shen, J.Y.; Li, X.L.; Xu, Y.; Hao, G.J.; Pan, X.Y.; Wang, G.X. and Yin, W.L., 2012. Isolation of bioactive components from Chelidonium majus with activity against Trichodina sp. Aquaculture. Vol. 318, pp: 235-238.
33
Yeh, Y.Y. and Liu, L., 2001. Cholesterol lowering effect of garlic extracts and organo-sulpur compounds: human and animal studies. J of Nutrition. Vol. 131, No. 3, pp: 989-993.
34
Zomorodian, K.; Saharkhiz, M.J.; Rahimi, M.J.; Bandegi, A.; Shekarkhar, G.; Bandegani, A.; Pakshir, K. and Bazargani, A., 2011. Chemical composition and antimicrobial activities of the essential oils from three ecotypes of Zataria multiflora. Pharmacognosy Magazine. Vol. 7, pp: 53-59.
35
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تاثیر عوامل فیزیکی - شیمیایی و حالت تروفی آب بر پرورش ماهی در قفس در سد ارس (آذربایجان غربی)
عواملی مانند افزایش مصرف جهانی ماهی، کاهش صید ماهیان دریایی و اقتصادی بودن باعث توجه به پرورش ماهی در قفس شده است. در پرورش ماهی معمولاً آبی دارای کیفیت مطلوب است که بقا و رشد ماهیان را به بهترین وجه تامین کند. هدف از این تحقیق بررسی کیفیت آب از لحاظ مناسب بودن برای پرورش ماهی در قفس در دریاچه پشت سد ارس آذربایجان غربی می باشد. نمونه برداری از 3 ایستگاه با تناوب فصلی از تابستان سال 1396 الی بهار 1397 انجام شد. نمونه برداری ها در ورودی، وسط دریاچه و تاج سد از سطح آب انجام شد. اندازه گیری دمای آب (درجه سانتی گراد)، هدایت الکتریکی (میکروزیمنس بر سانتی متر)و کل مواد جامد محلول (میلی گرم در لیتر) با استفاده از دستگاه EC متر WTW وpH وسط pHمتر WTW، اکسیژن (میلی گرم در لیتر) توسط اکسی مترWTW 320 انجام شد. مقادیر شاخص تروفی TSI بر اساس پارامترهای فسفر کل و عمق رویت سشی دیسک محاسبه شد. میزان شفافیت آب در ایستگاه های نمونه برداری بین 0/5 تا 1/3 متر متغیر بود. میزان فسفر کل در هر ایستگاه نمونه برداری در فصل تابستان بالاتر از سایر فصول بود. وضعیت تروفی آب سد ارس هیپریوتروف است که نشان دهنده بار فسفر بالا و آلودگی حاصل از رواناب های کشاورزی در این دریاچه است. مفهوم ظرفیت برد، کمبود منابع آب شیرین و وجود حالت هیپریوتروفی در تمام ایستگاه ها و فصول، حاکی از آن است که شرایط اکولوژیکی سد ارس برای پرورش ماهی در قفس مناسب نمی باشد و بنابراین توصیه نمی شود.
http://www.aejournal.ir/article_107213_d726291328506c2ea857cb10f495d1ab.pdf
2020-06-21
283
290
10.22034/aej.2020.107213
پرورش در قفس
ماهی
فاکتورهای فیزیکی- شیمیایی آب
سد ارس
مسعود
صیدگر
seidgar21007@yahoo.com
1
مرکز تحقیقات آرتمیای کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ارومیه، ایران
LEAD_AUTHOR
فریدون
محبی
mohebbi44@gmail.com
2
مرکز تحقیقات آرتمیای کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ارومیه، ایران
AUTHOR
علی
نکوئی فرد
dr.nekuiefard@gmail.com
3
مرکز تحقیقات آرتمیای کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ارومیه، ایران
AUTHOR
سیدرضا
سیدمرتضایی
rmortezaei@yahoo.com
4
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
شهرام
دادگر
shdadgar@yahoo.com
5
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
ژاله
علیزاده اوصالو
alizadeh.zhaleh@yahoo.com
6
مرکز تحقیقات آرتمیای کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ارومیه، ایران
AUTHOR
صابر
شیری
shiri21002@gmail.com
7
مرکز تحقیقات آرتمیای کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ارومیه، ایران
AUTHOR
ابراهیم پور، ص.؛ محمدزاده، ح.؛ نادری، ا. و آذرپیکان، آ.، 1374. ارزیابی یوتریفیکاسیون و تغذیه گرایی دریاچه ها با استفاده از سیستم اطلاعات جغرافیایی (مطالعه موردی دریاچه تالابی زریبار). شانزدهمین همایش انجمن زمین شناسی ایران. دانشگاه شیراز.
1
اسماعیلی ساری، ع.، 1379. مبانی مدیریت کیفی آب در آبزی پروری. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 263 صفحه.
2
اسماعیلی ساری، ع.، 1383. هیدروشیمی بنیان آبزی پروری. انتشارات اصلانی. 249 صفحه.
3
استاندارد ملی ایران. 1385. استاندارد کیفیت آب، تعیین آب استخر پرورش ماهی برای گونه های رایج گرمابی و سردابی، روش متداول، ویژگی ها (8726). موسسه استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران. 10 صفحه.
4
ابراهیم زاده موسوی، ح.ع.؛ ذبیحی محمودآبادی، ع.؛ قره باغی، ع. و منصوری دانشور، م.، 1388. بیماری های ماهی های زینتی. انتشارات علمی آبزیان. تهران، چاپ اول، صفحات 197 تا 210.
5
درویش صفت، ع.؛ جمالزاده فلاح، ف. و نظامی بلوچی، ش.، 1378. بررسی وضعیت تروفی تالاب انزلی با استفاده از GIS. مجله محیط شناسی. دوره 25، صفحات 1 تا 11.
6
علیزاده، م.، 1382. معرفی روش های آزمایشگاهی اندازه گیری آلودگی آب. انتشارات موج سبز. 23 صفحه.
7
کارگر. م.، 1383. بررسی لایه بندی حرارتی و تاثی آن بر کیفیت و وقوع اوتریفیکاسیون در مخزن سد حنا. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده کشاورزی، دانشگاه ارومیه. صفحات 126 تا 162.
8
کاظمی، ک. و امیرنژاد، ر.، 1391. بررسی پرغذایی دریاچه زریبار در استان کردستان با استفاده از شاخص تروفی. دومین کنفرانس برنامه ریزی و مدیریت محیط زیست. دانشکده منابع طبیعی کرج، دانشگاه تهران.
9
گل محمدی، ا. و شریعتی، ف.، 1395. بررسی تروفی تالاب امیرکلایه در استان گیلان با استفاده از شاخص TSI. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. دوره 30، صفحات 63 تا 72.
10
میرزاجانی، ع.؛ عباسی، ک.؛ سبک آرا، ج.؛ مکارمی، م.؛ عابدینی، ع. و صیادبورانی، م.، 1391. لیمنولوژی دریاچه الیگو مزوتروف تهم در استان زنجان. مجله زیسن شناسی ایران. دوره 25، شماره 1، صفحات 74 تا 89.
11
نظامی، ش.؛ ملکی شمالی، م.؛ سبک آرا، ج. و مکارمی، م.، 1377. مطالعه جامع شیلاتی دریاچه سد ارس. مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 248 صفحه.
12
Bhatnagar, A.; Jana, S.N.; Garg, S.K.; Patra, B.C.; Singh, G. and Barman, U.K., 2004. Water quality management in aquaculture. Course manual of summerschool on development of sustainable aquaculture technology in fresh & saline waters, CCS Haryana Agricultural, Hisar (India). pp: 203-210.
13
Boyd, C.E., 1998. Water quality for pond aquaculture. Research and Development Series No.43. International center for aquaculture & aquatic environments, Alabama agricultural Experiment Station, Auburn University, Alabama.
14
Boyd, C.E., 1990. Water quality in ponds for aquaculture. Alabama Agricultural Experiment Station, Auburn University. Birmingham Publishing.
15
Delince, G., 1993. The ecology of fish pond ecosystem. Springer-Siece.
16
Elmaci, A.; Ozengin, N.; Teksoy, A.; Olcaytopac, A. and SavasBaskaya, H., 2009. Evaluation of trophic state of lake Uluabat, Turkey. Journal of Environmental Biology. Vol. 30, No. 5, pp: 757-760.
17
Anusuya Devi, P.; Padmavathy, P.; Aanand, S. and Aruljothi, K., 2017. Review on water quality parameters in freshwater cage fish culture. International Journal of Applied Research. Vol. 3, No. 5, pp: 114-120.
18
Bailey, M. and Sandford, G., 2002. The Ultimate Aquarium, A Definitive Guide to Identifying and Keeping Freshwater and Marine Fishes, Lorenz books. pp: 54-87.
19
Banerjee, S.M., 1967.Water quality and soil condition of fishponds in states of India in relation to fish production. Indian Journal of Fisheries. Vol. 14, No. 1-2, pp: 115-144.
20
Beveridge, M.C.M., 1984. Cage and pen fish farming: carrying capacity models and environmental impacts. FAO Fish. Tech. Pap. Vol. 255, pp: 1-131.
21
Beveridge, M.C.M., 1993. Cage and pen fish farming: carrying capacity models and environmental impact. FAO Fisheries Technical Paper. No. 255. Rome, FAO. 131 p.
22
Bhatnagar, A. and Devi, P., 2013. Water quality guidelines for the management of pond fish culture. International J of Environmental Sciences. Vol. 3, No. 6, pp: 1980-2009.
23
Bhatnagar, A. and Garg, S.K., 2000. Causative factors of fish mortality in still water fish ponds under subtropical conditions. Aquaculture. Vol. 1, No. 2, pp: 91-96.
24
Bugrov, L., 1992. Rainbow trout culture in submersible cages near offshore oil platforms. Aquaculture. Vol. 100, No. 1-3, pp: 169. DOI: 10.1016/0044-8486(92)90359-S.
25
Demir, N.; Kirkagac, M.U.; Pulatsu, S. and Bekcan, S., 2001. Influence of trout cage culture on water quality, plankton and benthos in an Anatolian Dam Lake. The Israeli Journal of Aquaculture. Vol. 53, No. 3-4, pp: 115-127.
26
Eglal, A.O.; Nour, A.M.; Essa, M.A.; Zaki, M.A. and Mabrouk, H.A., 2009. Technical and economical evaluation of small-scale fish cage culture for youth in the River Nile for Egypt: 1. Effect of stocking density of monosex Nile Tilapia (Oreochromisniloticus) fingerlings. In: Yang, Y.; Wu, X.Z. and Zhou, Y.Q., (Eds.), Cage aquaculture in Asia: Proceeding of the International symposium on cage aquaculture in Asia: pp: 107- 114. Asian Fisheries Society, Manila, Philippines and Zhejiang University, Hangzhou, China.
27
Gorlach-Lira, K.; Pacheco, C.; Carvalho, L.C.T.; Junior, H.N.M. and Crispim, M.C., 2013. The influence of fish culture in floating net cages on microbial indicators of water quality. Braz. J. Biol. Vol. 73, No. 3, pp: 457-463.
28
Halwart, M.; Soto, D. and Richard Arthur, J., 2007. Cage aquaculture regional review and global overview. 1st ed., Food and Agriculture Organization of the United Nation Publisher Co, Rome. pp: 14-29.
29
Jiwyam, W., 2012. Extensive net cage culture of Nile Tilapia (Oreochromis niloticus) fingerlings in nutrient-enriched pond. Our Nature. Vol. 10, pp: 61-70.
30
Jiwyam, W. and Chareontesprasit, N., 2001. Cage culture of Nile tilapia and its loading in a Freshwater Reservoir in Northeast Thailand. Pakistan Journal of Biological Sciences. Vol. 4, No. 5, pp: 614-617.
31
Joseph, I., 2009. Important management measures in cage culture. In: National training on ‘cage culture of Seabass’ held at CMFRI, Kochi. pp: 50-56.
32
Keremah, R.I.; Davies, O.A. and Abezi, I.D., 2014. Physico-Chemical Analysis of Fish Pond Water in Freshwater Areas of Bayelsa State, Nigeria. Greener Journal of Biological Sciences. Vol. 4, No. 2, pp: 33-38.
33
Mallasen, M.; Barros, H.P.; Traficante, D.P. and Camargo, A.L.S., 2012. Influence of a net cage tilapia culture on the water quality of the Nova Avanhandava reservoir, Sao Paulo state, Brazil. Acta Scientiarum Biological Sciences. Vol. 34, No. 3, pp: 289-296.
34
Meynendonckx, J.; Heuvelmans, G.; Muys, B. and Feyen, J., 2006. Effects of watershed and riparian zone characteristics on nutrient concentrations in the River Scheldt Basin. Hydrology and Earth System Sciences Discussions. Vol. 3, No. 3, pp: 653-679.
35
Mondal, M.N.; Shahim, J.; Wahab, M.A.; Asaduzzaman, M. and Yang, Y., 2010. Comparison between cage and pond production of Thai Climbing Perch and Tilapia under three management systems. J. Bangladesh Agril. Univ. Vol. 8, No. 2, pp: 313-322.
36
Nausch, M. and Nausch, G., 2007. Bioavailable dissolved organic phosphorus and phosphorus use by heterotrophic bacteria. Aquatic biology. Vol. 1, pp: 151-160. doi:10.3354.
37
Nyanti, L.; Hii, K.M.; Sow, A.; Norhadi, I. and Ling, T.Y., 2012. Impacts of Aquaculture at different Depths and Distances from cage culture sited in Batang Ai Hydroelectric Dam Reservoir Sarawak, Malaysia. World Applied Sciences Journal. Vol. 19, No. 4, pp: 451-456.
38
Pitta, P.; Karakassis, I.; Tsapakis, M. and Zivanovic, S., 1999. Natural vs. mariculture induce variability in numbers and plankton in the eastern Mediterranean. Hydrobiologia. Vol. 391, pp:181-194.
39
Rao, M., 2011. Impact of phosphorus on water quality. Publication no.SL 275, University of Florida, IFAD Extension.
40
Robert, C.S.; Grindley, E. and William, E.E., 1940. Fish invest servl. Vol. 4, No. 2.
41
Santhosh, B. and Singh, N.P., 2007. Guidelines for water quality management for fish culture in Tripura. ICAR Research Complex for NEH Region, Tripura Center, Publication. 29 p.
42
Sharma, M.P.; Kumar, A. and Rajvanshi, S., 2010. Assessment of trophic state of lakes: a case of Mansi Ganga Lake in India. Hydro Nepal. Journal of Water, Energy and Environment. Vol. 6, pp: 65-72.
43
Shieh, S.H. and Yang, P.S., 2000. Community structure and Functional Organization of Aquatic Insect in Agriculture Mounitain stream of Taiwan: 1985-1986 and 1995-1996.
44
Siti-zahrah, A.; Padilah, B.; Azila, R.; Rimatulhana, R. and Shahidan, H., 2008. Multiple streptococcal species infection in cage-cultured Red Tilapia but showing similar clinical signs, pp 313-320. In: Bonded-Reantaso, M.G.; Mohan, C.V.; Crumlish, M. and Subasinghe, R.P., (Eds.), Disease in Asian Aquaculture VI. Fish Health Section, Asian Fisheries Society, Manila, Philippines. 505 p.
45
Tarzwell, C.M., 1957. Water quality criteria for aquatic life. In: Biological problems in water pollutions. U.S. Dept of Health Education and welfare, P.H.S. pp: 246-272.
46
Thirupathaiah,M.;Samatha,Ch. and Sammaiah,C., 2012. Analysis of water quality using physico-chemical parameters in lower manair reservoir of Karimnagar district, Andhra Pradesh. International Journal of Environmental Sciences. Vol. 3, No. 1, pp: 172-180.
47
Zanatta, A.S.; Perbiche-Neves, G.; Ventura, R.; Ramos, I.P. and Carvalho, E.D., 2010. Effects of a small fish cage farm on zooplankton assemblages (Cladocera and Copepoda: Crustacea) in a sub-tropical reservoir. Pan American Journal of Aquatic Sciences. Vol. 5, No. 4, pp: 530-539.
48
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی توانایی جذب نیترات و فسفات از پساب استخرهای پرورش ماهیان گرمابی استان خوزستان توسط ریزجلبک Chlorella vulgaris
فاضلاب ها می توانندمنابع آبی را آلوده نمایند به همین علت امروزه تاکید بسیاری بر تصفیه و پاکسازی فاضلاب ها و پساب ها می شود.یکی از روش های کاربردی در تصفیه فاضلاب، استفاده از گیاهان از جمله میکروجلبک ها می باشد که با استفاده از نور خورشید، مواد مغذی فاضلاب را مصرف کرده و آن را به توده های زیستی مفید تبدیل می کنند. لذا در این پژوهش قابلیت حذف برخی پارامترهای آلودگی پساب با استفاده از میکروجلبک Chlorella vulgarisمورد آزمایش قرار گرفت. بدین منظور برای رشد میکروجلبک از آب مقطر اتوکلاو شده و محیط کشت TMRL استفاده شد، پساب مورد استفاده از استخر پرورش ماهیان گرمابی استان خوزستان تهیه گردید. رشد میکروجلبک در تیمار شاهد و تیمار پساب هر 48 ساعت یک بار و در شرایط آزمایشگاهی ثابت (دمای 27-23 درجه سانتی گراد، شوری 20ppt و شدت نوری 2500 لوکس) در بازه زمانی 15 روز محاسبه شد. شاخصهایCOD ، BOD، نیترات، نیتریت و فسفات هر 48 ساعت یک بار اندازه گیری و محاسبه شدند. نتایج حاصل از آنالیز آماری بین بازه های زمانی مختلف در تعداد ریزجلبک در تیمار شاهد تغییر معنی داری نشان داد به طوری که بالاترین تعداد جلبک در روز یازدهم مشاهده شد ولی از روز چهاردهم به بعد کاهش نسبی یافت، هم چنین نتایج حاکی از وجود اختلاف معنی دار در میزان حذفBOD وCOD درکشت ریزجلبک بود به طوری که کم ترین میزان این دو فاکتور در روز دهم مشاهده گردید. نیترات باقی مانده نیز به ترتیب در روز سوم و دهم بیش ترین و کم ترین میزان را به خود اختصاص داد. میزان نیتریت نیز در روز سوم بالاترین و در روز پانزدهم پایین ترین مقدار را داشت، فسفات نیز در روزهای سوم، پنجم، دهم و پانزدهم نسبت به روز اول کاهش معنی دار نشان داد. این نتایج، توانایی ریزجلبک را در کاهش ازت و فسفر پساب و امکان کاربرد آن جهت تصفیه پساب نشان داد، به نظر می رسد که این ریزجلبک قادر است برای حذف نیترات و فسفات و نیز تولید زیست توده جلبکی در سیستم های پالایش پساب خروجی استخرهای پرورش ماهی، قبل از ورود به محیط طبیعی مورد استفاده قرار گیرد، هم چنین پساب استخر می تواند به عنوان محیط کشتی مناسب برای تولید انبوه این جلبک مورد استفاده قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_107264_c788ae058928c61d6f272ae1ad799f48.pdf
2020-06-21
291
298
10.22034/aej.2020.107264
کلرلا
BOD
COD
نیترات
فسفات
پساب
لاله
آذرم
laleh.a58@yahoo.com
1
گروه مهندسی محیط زیست، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
AUTHOR
نرگس
جوادزاده
nargesjavadzadeh@yahoo.com
2
گروه شیلات، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
رضا
جلیل زاده
rahma.reza@gmail.com
3
گروه مهندسی محیط زیست، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
AUTHOR
ابوالحسنی، م.ه.؛ حسینی، س.ع.؛ قربانی، ر. و وینسه، ا.، 1395 الف. امکان سنجی تولید زیست توده و حذف فسفات و نیترات از پساب شهری به وسیله کشت جلبک کلرلا وولگاریسChlorella vulgaris. نشریه توسعه آبزی پروری. سال10، شماره 2، صفحات 1 تا 8.
1
ابوالحسنی، م.ه.؛ حسینی، س.ع.؛ قربانی، ر. و وینسه، ا.، 1395 ب. حذف فسفات و نیترات از پساب شهری به وسیله کشت جلبک Scenedesmus obliquus و تولید زیست توده جلبکی. مجله بوم شناسی آبزیان. سال 5، شماره 4، صفحات 33 تا 39.
2
احمدپور، ن.؛ صیادی، م.ح.؛ فلاحی کپورچالی، م. و رضایی، م.، 1394. حذف فسفات به وسیله ریزجلبک ها از پساب خروجی فاضلاب شهری در شرایط آزمایشگاهی. زیست فناوری دانشگاه تربیت مدرس. سال 6، شماره 2، صفحات 49 تا 54.
3
آخوندیان، م. و میرحسن نیا، س.د.، 1396. تنوع زیستی ریز جلبک ها، ظرفیتی بالقوه در فناوری های زیستی و محیطی. فصلنامه انسان و محیط زیست. سال 19، شماره 41، صفحات 39 تا 70.
4
افشاری، ع.؛ یحیوی، م. و سجادی، م.م.، 1393. استفاده از پساب ثانویه شهری به عنوان محیط کشت جایگزین برای پرورش ریز جلبک Tetraselmis suecica. نشریه اقیانوس شناسی. سال 5، شماره 18، صفحات 79 تا 85.
5
باقری، ش. و معصومی زاده، س.ز.، 1395. بررسی رشد میکروجلبک Chlorella sp در آب دریا و فاضلاب غیراستریل. مجله علمی شیلات ایران. سال 26، شماره 2، صفحات 153 تا 163.
6
حیدری، ص.؛ فرهادیان، ا. و محبوبی صوفیانی، ن.، 1390. تولید زیست توده و حذف آمونیاک و نیترات از پساب کارگاه پرورش ماهی به وسیله کشت جلبک سبز Scenedesmus quadricauda. محیط شناسی. سال 37، شماره 59، صفحات 15 تا 28.
7
شریعتی، م. و طاهری، ر.، 1395. حذف نیتروژن و فسفات از فاضلاب شهری توسط ریزجلبک Chlorella vulgaris و تعیین معادله سینتیکی رشد آن. مجله زیست شناسی کاربردی دانشگاه الزهرا. سال 29، شماره 2، صفحات 117 تا 130.
8
شکوری، الف.، و بلوچ، گ.، 1395. تاثیر غلظت های مختلف نیترات و فسفات بر رشد جلبک سبز Ulva rigida در تانک های 40 لیتری در فضای باز. مجله اقیانوس شناسی. سال 7. شماره 28. صفحات 36-29.
9
عباسی بیرگانی، م.؛ علیزاده، ر.؛ طهماسبی انفرادی، س. و سلطانیان، س.، 1396. تصفیه بیولوژیکی فاضلاب خانگی با استفاده از میکروجلبک Chlorella vulgaris در مقیاس آزمایشگاهی. مجله محیط زیست و مهندسی آب. سال 3، شماره 2، صفحات 144 تا 156.
10
کیانمهر، ه.، 1387. بیولوژی جلبک ها. انتشارات دانشگاه فردوسی مشهد. 336 صفحه.
11
فرهادیان، ا.؛ فلاحی، س.م. و محبوبی صوفیانی، ن.، 1393. تاثیر غلظت های مختلف فسفر بر زیست توده و رشد جلبک سبز Chlorococum. مجله زیست شناسی ایران. سال 27، شماره 3، صفحات 478 تا 489.
12
منزوی، م. ت.، 1392. فاضلاب شهری- تصفیه فاضلاب. انتشارات دانشگاه تهران. 266 صفحه.
13
نجیمی، ز.؛ سلیمی، ل. و ربانی، م.، 1395. بررسی اثر ریزجلبک های Scenedesmus obliquus وChlorella vulgaris استخراج شده از فاضلاب و تاثیر آن بر روی حذف برخی پارامترهای آلودگی پساب خانگی. اولین کنفرانس بین المللی آب. محیط زیست و توسعه پایدار. 14 صفحه.
14
Abe, K.; Imamaki, A. and Morio., H., 2002. Removal of nitrate, nitrite, ammonium and phosphate ions from water by the aerial microalga Trentepohlia aurea. Journal of applied phycology. Vol. 14, No. 2, pp: 129-134.
15
APHA. 1995. Standard methods for the examination of water and wastewater 19th edition. American Public Health Association. pp: 83-113.
16
Arbib, Z.; Ruiz, J.; Alvarez, P.; Garrido, C.; Barragan, J. and Perales, J.A., 2012. Chlorella stigmatophora for urban wastewater nutrient removal and CO2 abatement. International Journal of Phytoremediation. Vol. 14, No. 7, pp: 714-725.
17
De-bashan, L.E.; Moreno, M.; Hernandez, J.P. and Bashan, Y., 2002. Removal of ammonium and phosphorus ions from synthetic wastewater by the microalgae Chlorella vulgaris coimmobilized in alginate beads with the microalgae growth-promoting bacterium Azospirillum brasilense. Journal of Water Research. Vol. 36, No. 12, pp: 2941-2948.
18
kim, J.; Lingaraju, B.; Rheaume, R.; Lee, J. and Siddiqui, K., 2010. Removal of Ammonia from Wastewater Effluent by Chlorella Vulgaris. Tsinghua science and Thechnolgy. Vol. 14, No. 4, pp: 391-396.
19
Lee, K. and Lee, C.G., 2001. Effect of light/dark cycles on wastewater treatments by microalgae. Biotechnology and Bioprocess Engineering. Vol. 6, pp: 194-199.
20
Martinez, M.E.; Sanchez, S.; Jimenez, J.M.; Yoysfi, F.E. and Munoz, L., 2000. Nitrogen and phosphorus removal from urban wastewater by the microalga Scenedesmus obliquus. Bioresource Technology. Vol. 73, pp: 263-272.
21
Munoz, P. and Guieysse, B., 2006. Algalbacterial processes for the treatment of hazardous contaminants: a review. Water research. Vol. 40, pp: 2799-2815.
22
Ravipratap, S.; Rohan, B. and Sibi, G., 2017. Nurennt Removal Efficiencies of Chlorella vulgaris from urban Wastewater for Reduced Eutrophication. Journal of Environmental Protection. Vol. 8, No. 1, pp: 1-11.
23
Rawat, I.; Kumar, R.R.; Mutanda, T. and Bux, F., 2011. Dual role of microalgae: Phycoremediation of domestic wastewater and biomass production for sustainable biofuels production. Appl. Energy. Vol. 88, No. 10, pp: 3411-3424.
24
Tam, N.F.Y. and Wong, Y.S., 1996. Effect of ammonia concentrations on growth of Chlorella vulgaris and nitrogen removal from media. Bioresource Technology. Vol. 57, pp: 59-66.
25
ORIGINAL_ARTICLE
امکانسنجی ردیابی روند تغییرات محتوی فلزات سنگین در محیط توسط زنبورعسل به عنوان گونه زیستشناساگر
از آن جا که زنبورعسل بهعلت ویژگی های ذاتی و رفتار تغذیه ای خود از قابلیت بالایی در جذب آلاینده های محیطی و به ویژه فلزات سنگین برخوردار است، این مطالعه با هدف امکان سنجی معرفی زنبورعسل به عنوان گونه زیست شناساگر در ردیابی عناصر آرسنیک، روی، سرب و نیکل در محیط در سال 1396 در کانون های عمده زنبورداری و تولید عسل استان مرکزی انجام شد. بدین منظور، در مجموع، 180 نمونه خاک، گیاه (شامل ریشه و گل گون)، زنبور عسل و عسل از دوازده ایستگاه واقع در شهرستان های اراک، خمین و شازند جمع آوری شد. پس از هضم اسیدی نمونه ها، محتوی عناصر در آن ها با استفاده از طیف سنج پلاسمای جفت شده القایی تعیین شد. نتایج نشان داد که میانگین غلظت عناصر (میلی گرم در کیلوگرم) آرسنیک، روی، سرب و نیکل در نمونه های زنبور عسل به ترتیب برابر با 2/29، 99/90، 4/40 و 2/77 میلی گرم در کیلوگرم بوده است. این در حالی است که، میانگین غلظت عناصر مذکور در نمونه های عسل به ترتیب برابر با 0/55، 11/82، 0/36 و 1/88 میلی گرم در کیلوگرم تعیین شد. از آن جا که مقایسه بین محتوی عناصر آرسنیک، روی، سرب و نیکل نمونه های گل گون با زنبور عسل بیانگر وجود همبستگی مثبت و از طرفی مقایسه بین محتوی همین عناصر در نمونه های گل گون با عسل نشان دهنده وجود همبستگی منفی بود، می توان نتیجه گرفت که زنبورعسل به عنوان یک زیست شناساگر بالقوه از قابلیت تشخیص روند تغییرات فلزات سنگین در محیطی که در آن زندگی می کنند، برخوردار است.
http://www.aejournal.ir/article_107325_4525b8de988b85cbb80a58e113a6ac03.pdf
2020-06-21
299
310
10.22034/aej.2020.107325
زنبور عسل
زیستشناساگر
عناصر سمی و ضروری
پایش زیستی
ایران
رضوان
داودپور
r.davoodpour@iauh.ac.ir
1
ﮔﺮوه علوم و مهندسی محیط زﻳﺴﺖ، واﺣﺪ همدان، داﻧﺸﮕﺎه آزاد اﺳﻼمی، همدان، ایران
AUTHOR
مهرداد
چراغی
cheraghi.mehrdadd@gmail.com
2
ﮔﺮوه علوم و مهندسی محیط زﻳﺴﺖ، واﺣﺪ همدان، داﻧﺸﮕﺎه آزاد اﺳﻼمی، همدان، ایران
LEAD_AUTHOR
سهیل
سبحان اردکانی
s_sobhan@iauh.ac.ir
3
ﮔﺮوه علوم و مهندسی محیط زﻳﺴﺖ، واﺣﺪ همدان، داﻧﺸﮕﺎه آزاد اﺳﻼمی، همدان، ایران
AUTHOR
نوراله
عبدی
no-abdi@iau-arak.ac.ir
4
ﮔﺮوه مرتع و آبخیزداری، واﺣﺪ اراک، داﻧﺸﮕﺎه آزاد اﺳﻼمی، اراک، ایران
AUTHOR
بهاره
لرستانی
lorestani.ba@iauh.ac.ir
5
ﮔﺮوه علوم و مهندسی محیط زﻳﺴﺖ، واﺣﺪ همدان، داﻧﺸﮕﺎه آزاد اﺳﻼمی، همدان، ایران
AUTHOR
آقانباتی، ع.، 1389. زمین شناسی و توان معدنی استان مرکزی. زمین شناسی رشد. دوره 16، شماره 2، صفحات 4 تا 15.
1
حاج رسولی ها، ش.؛ امینی، ح.؛ هودجی، م. و نجفی، پ.، 1385. زیست ردیابی آلودگی هوا و خاک در منطقه اصفهان. پژوهش در علوم کشاورزی. دوره 2، شماره 2، صفحات 39 تا 54.
2
خادم حقیقت، م. و قدوسی، ج.، 1364. ﺗﻮزﯾﻊ ﺳﺮب در ﺑﺮگ ﻫﺎی ﭼﻨﺎر ﻧﺴﺒﺖ ﺑﻪ ﻣﺮاﮐﺰ ﺗﺮدد ﺧﻮدروﻫﺎ در ﻣﻨﺎﻃﻖ ﻣﺨﺘﻠﻒ ﺗﻬﺮان. انتشارات ﺟﻬﺎد دانشگاهی تهران. 101 صفحه.
3
داودپور، ر.؛ سبحان اردکانی، س.؛ چراغی، م.؛ عبدی، ن. و لرستانی، ب.، 1397. بررسی قابلیت انباشتگی زیستی و تثبیت آرسنیک و برخی فلزات سنگین توسط گونه گون پنبه ای (Astragalus gossypinus). پژوهش های گیاهی. پذیرفته شده برای انتشار.
4
درویش نیا، ز.؛ ریاحی بختیاری، ع.؛ کامرانی، ا. و سجادی، م.، 1394. تجمع زیستی فلزات سنگین (سرب، آهن و روی) در بافت اسکلتی مرجان خانواده Faviidae و رسوبات پیرامونی آن در جنوب جزیره قشم، خلیج فارس. بوم شناسی آبزیان. دوره 5، شماره 1، صفحات 77 تا 87.
5
دهرآزما، ب.؛ رحمتی، ش.؛ اصغری، ح. و صادقیان، م.، 1394. ارزیابی تأثیر معدن متروکه مس چغندر سر بر غلظت عناصر سنگین در خاک و گیاهان بومی منطقه جنوب غرب عباس آباد. مهندسی معدن. دوره 10، شماره 27، صفحات 81 تا 94.
6
رحیم ملک، م.؛ فضیلتی، م.؛ غریبی، ش. و وهابی، م.، 1390. ﺑﺮﺭﺳﻲ ﺗﻨﻮﻉ ﮊﻧﺘﻴﮑﻲ ﺟﻤﻌﻴﺖ های ﮔﻮﻥ های ﺯﺭﺩ ﻭ ﺳﻔﻴﺪ ﺩﺭ ﻣﻨﺎﻃﻖ ﺣﻔﺎﻇﺖ شده ﺍﺳﺘﺎﻥ ﺍﺻﻔﻬﺎﻥ ﺑﺎ ﺍﺳﺘﻔﺎﺩﻩ ﺍﺯ ﻧﺸﺎﻧﮕﺮ ISSR. ﺗﻮﻟﻴﺪ ﻭ ﻓﺮآﻭﺭﻱ ﻣﺤﺼﻮﻻﺕ ﺯﺭﺍﻋﻲ و باغی. دوره 1، ﺷﻤﺎﺭﻩ1، صفحات 25 تا 34.
7
سبحان اردکانی، س.؛ جمالی، م. و معانی جو، م.، الف 1393. بررسی غلظت آرسنیک، روی، کروم و منگنز در منابع آب زیرزمینی دشت رزن و تهیه نقشه پهنه بندی عناصر با استفاده از سیستم اطلاعات جغرافیایی. علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 16، شماره 2، صفحات 25 تا 38.
8
سبحان اردکانی، س.؛ معانی جو، م. و اسدی، ه.، ب1393. ﺑﺮرﺳﻲ ﻏﻠﻈﺖ ﺳﺮب، ﻛﺎدﻣﻴﻮم، ﻣﺲ و ﻣﻨﻴﺰﻳﻢ در ﻣﻨﺎﺑﻊ آب زﻳﺮزﻣﻴﻨﻲ دﺷﺖ رزن. مجله پزشکی بالینی ابن سینا، دوره 21، شماره 4، صفحات 319 تا 329.
9
سنجر،ف.؛ جواهری، م. و عسکری ساری، ا.، 1388. اندازه گیری و مقایسه فلزات سنگین (سرب و کادمیوم) در عضله و پوست ماهی زمین کن دم نواری (Platycephalus indicus) منطقه صیادی بندر ماهشهر. بیولوژی دریا. دوره 1، شماره 4، صفحات 35 تا 46.
10
عاقلان، ن. و سبحان اردکانی، س.، 1395. بررسی مخاطره سلامت مصرف چای عرضه شده در بازار مصرف شهر همدان (مطالعه پتانسیل خطر آرسنیک، سرب، کادمیوم و کروم). مجله پزشکی بالینی ابن سینا، دوره 23، شماره 1، صفحات 65 تا 74.
11
عباس زاده، ح.؛ محمدی روزبهانی، م. و سبحان اردکانی، س.، 1398. امکان سنجی استفاده از برگ درختان کنار (Ziziphus spina-christi) و کهور (Prosopis cineraria) به عنوان زیست شناساگر آلودگی فلزات سنگین منتشرشده از مناطق صنعتی. سلامت و محیط زیست. دوره 12، شماره 1، صفحات 87 تا 100.
12
عبدی، ن.؛ عبدی، م. و حسن زاده، ص.، 1389. معرفی گیاهان دارویی شهرستان اراک. یافته های نوین کشاورزی. دوره 5، شماره 1، صفحات 37 تا 49.
13
عظیمی، ع.؛ صفاهیه.، ع.؛ علی داداللهی، س.؛ ذوالقرنین، ح. و سواری، ا.، 1390. تجمع زیستی فلزات سنگین جیوه، کادمیوم، سرب و مس در دوکفه ای در منطقه بندر امام خمینی (ره). علوم و فنون دریایی. دوره 10، شماره 3، صفحات 23 تا 32.
14
کرباسی، ع.؛ نبی بیدهندی، غ.؛ معطر، ف. و برزگری، ز.، 1388. بررسی و منشأ و دسترسی بیولوژیکی عناصر سنگین در خاک ارتفاعات شمال غرب تهران. علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 11، شماره 3، صفحات 29 تا 41.
15
کیان پور، س. و سبحان اردکانی، س.، 1396. بررسی محتوی عناصر روی، سرب، کادمیوم و مس در محصول گندم و نان مصرفی برخی از مزارع و نانوایی های شهر همدان. بهداشت مواد غذایی. دوره 7، شماره 4، صفحات 83 تا 93.
16
مشروفه، ا.؛ ریاحی بختیاری، ع. و پورکاظمی، م.، 1392. غلظت کادمیوم، نیکل، وانادیوم و روی در عضله و خاویار تاس ماهی ایرانی با تاکید بر ارزیابی ریسک ناشی از مصرف عضله Acipenser persicus. سلامت و محیط. دوره 6، شماره 3، صفحات 407 تا 416.
17
ملکی راد، ع.ا.؛ فانی، ع.؛ عبداللهی، م.؛ عریان، ش.؛ باباپور، و.؛ شریعت زاده، س.م.ع. و داودی، م.، 1389. پارامترهای خونی ادراری و روانی- شناختی کارگران معدن مواجهه یافته با سرب و روی. مجله دانشگاه علوم پزشکی اراک. دوره ۱۳، شماره ۴، صفحات 106 تا 114.
18
نبی لو، س.؛ مطلبی، ع. و شیخ لویی، ح.، 1396. میزان فلزات سنگین سرب و قلع در عسل های تصفیه شده (صنعتی)، تصفیه نشده (سنتی) و مومدار در استان زنجان. بهداشت مواد غذایی. دوره 7، شماره 4، صفحات 68 تا 71.
19
هدایتی فر، ر.؛ فلاحی، ا. و بیرجندی، م.، 1389. اندازه گیری مقدار فلزات سرب و کادمیوم نمونه های برنج پر مصرف استان لرستان و مقایسه آن با استانداردهای ملی. یافته. دوره 12، شماره 4، صفحات 15 تا 23.
20
Achudume, A.C. and Nwafor, B.N., 2010. The ecological assessment of metals in local brands of honey in southwest Nigeria. African Journal of Agricultural Research. Vol. 5, pp: 2608-2610.
21
Akinola, M.O.; Njoku, K.L. and Ifitezue, N.V., 2011. Assessment of heavy metals (lead and cadmium) concentration in Paspalum orbiculare near municipal refuse dumpsites in Lagos State, Nigeria. Journal of Ecology and the Natural Environment. Vol. 3, pp: 509-514.
22
Al Naggar, A.; El-Saied, A.; Naiem Amal, I.; Seif Mohamed, I.H. and Mona, H., 2013. Honey bees and their products as a bio-indicator of environmental pollution with heavy metals. Mellifera. Vol. 13, pp: 10-20.
23
Badiou-Bénéteau, A.; Benneveau, A.; Géret, F.; Delatte, H.; Becker, N.; Brunet, J.L.; Reynaud, B. and Belzunces, L.P., 2013. Honeybee biomarkers as promising tools to monitor environmental quality. Environment International. Vol. 60, pp: 31-41.
24
Bahreyni, R.; Mirhadi, S.; Javaheri, S. and Talebi, M., 2006. The survey on situation of heavy metals in honey, pollen and adult bees of Tehran Province. Apiaries. Vol. 15, pp: 247-252.
25
Barganska, Z.; Slebioda, M. and Namieśnik, J., 2016. Honey bees and their products: Bioindicators of environmental contamination. Critical reviews in environmental science and technology. Vol. 46, pp: 235-248.
26
Bibi, S.; Husain, S.Z. and Malik, R., 2008. Pollen analysis and heavy metals detection in Honey samples from seven selected countries. Pakistan J of Botany. Vol. 40, pp: 507-516.
27
Bilandzic, N.; Gacic, M.; Dokic, M.; Sedak, M.; Sipusic, D.I.; Koncurat, A. and Gajger, I.T., 2014. Major and trace elements levels in multiflora and uniflora honeys in Croatia. J of Food Composition and Analysis. Vol. 33, pp: 132-138.
28
Blanco Rodriguez, P.; Vera Tomé, F., Pérez Fernandez, M. and Lozano, J.C., 2006. Linearity assumption in soil to plant transfer factors of natural uranium and radium in Helianthus annuus L. Science of the Total Environment. Vol. 361, pp: 1-7.
29
Bogdanov, S.B.; Zimerli, M. and Erard, M., 1985. Heavy metals in honey. Lebensmitteluntersuchung und Hygiene. Vol. 77, pp:153-158 (In German).
30
Bromenshenk, J. and Preston, E.M., 1986. Public participation in environmental monitoring; a means of attaining network capability. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 6, pp: 35-47.
31
Celli, G. and Maccagnani, B., 2003. Honey bees as bioindicators of environmental pollution. Bulletin of Insectology. Vol. 56, pp: 137-139.
32
Chen, C.Y. and Chen, M.H., 2003. Investigation of Zn, Cu, Cd and Hg concentration in the oyster of Chi-ku, Taishi and Tapeng Bay, Southwestern Taiwan. Journal of Food and Drug Analysis. Vol. 11, pp: 32-38.
33
Chirenje, T.; Ma, L.Q.; Chen, M. and Zillioux, E.J., 2003. Comparison between background concentrations of arsenic in urban and non-urban areas of Florida. Advances in Environmental Research. Vol. 8, pp: 137-146.
34
Chojnacka, K.; Chojnacki, A.; Gorecka, H. and Gorecki, H., 2005. Bioavailability of heavy metals from polluted soils to plants. Science of the Total Environment. Vol. 337, pp: 175-182.
35
Conti, M.E. and Botré, F., 2001. Honeybees and their products as potential bio-indicators of heavy metal contamination. Environal Monitoring and Assessment. Vol. 69, pp: 267-282.
36
Crane, E., 1984. Bees, honey and pollen as indicators of metals in the environment. Bee World. Vol. 65, pp: 47-49.
37
Ding, Q.; Cheng, G.; Wang, Y. and Zhuang, D., 2016. Effect of natural factors on the spatial distribution of heavy metals in soils surrounding mining regions. Science of the Total Environment. Vol. 578, pp: 577-585.
38
do Nascimento, A.S.; Dechechi Chambo, E.; de Jesus Oliveira, D.; Ramos Andrade, B.; Santana Bonsucesso, J. and de Carvalho, C.A.L., 2018. Honey from stingless bee as indicator of contamination with metals. Sociobiology. Vol. 65, pp: 727-736.
39
Facchinelli, A.; Sacchi, E. and Mallen, L., 2001. Multivariate statistical and GIS-based approach to identify heavy metal sources in soils. Environmental Pollution. Vol. 114, pp: 313-324.
40
Formicki, G.; Gren1, A.; Stawarz, R.; Zyśk, B. and Gał1, A., 2013. Metal Content in Honey, Propolis, Wax, and Bee Pollen and Implications for Metal Pollution Monitoring. Polish J of Environmental Studies. Vol. 22, pp: 99-106.
41
Frias, I.; Rubio, C.; Gonzalez-Iglesias, T.; Gutierrez, A.; Gutierrez, D. and Hardisson, A., 2008. Metals in fresh honeys from Tenerife Island, Spain. Bulletin of environmental Contamination and Toxicology. Vol. 80, pp: 30-33.
42
Giglio, A.; Ammendola, A.; Battistella, S.; Naccarato, A.; Pallavicini, A.; Simeon, E.; Tagarelli, A. and Giulianini, P.G., 2017. Apis mellifera ligustica, Spinola 1806 as bioindicator for detecting environmental contamination: a preliminary study of heavy metal pollution in Trieste, Italy. Environmental Science and Pollution Research. Vol. 24, pp: 659-665.
43
Hegazi, A.A. and El-Kady, A., 2010. Effect of road dust on vegetative characters and leaves heavy metal contents of Zizyphus spina-christi (L.). willd, Syzygium cuimini (L.) skeels and Olea europea (L.) seedlings. Horticultural Science and Ornamental Plants. Vol. 2, pp: 98-107.
44
Hernandez, O.M.; Fraga, J.M.G.; Jimenez, A.I.; Jimenez, F. and Arias, J.J., 2005. Characterization of honey from the Canary Islands: determination of the mineral content by atomic absorption spectrophotometry. Food Chemistry. Vol. 93, pp: 449-458.
45
Hosseini, S.V.; Aflaki, F.; Sobhanardakani, S. and Bandehkhoda Langaroudi, S., 2015. Selected metals in canned fish consumed in Iran. Iranian Journal of Toxicology. Vol. 8, pp: 1182-1187.
46
Jeliazkova, I.; Marinova, M. and Peneva, V., 2001. Honey bee and their products as bioindicators for environmental pollution. I. Study on mineral content of body of bee-workers received different doses of microelements with their food. Journal of Animal Science. Vol. 38, pp: 37-40.
47
Matin, G.; Kargar, K. and Baha Buyukisik, H., 2016. Bio monitoring of cadmium, lead, arsenic and mercury in industrial districts of Izmir, Turkey by using honey bees, propolis and pine tree leaves. Ecological Engineering. Vol. 90, pp: 331-335.
48
Mohammadi Aghamirlou, H.; Khadem, M.; Rahmani, A.; Sadeghian, M.; Mahvi, A.H.; Akbarzadeh, A. and Nazmara, Sh., 2015. Heavy metals determination in honey samples using inductively coupled plasma-optical emission spectrometry. Journal of Environmental Health Science and Engineering. Vol. 13, pp: 2-8.
49
Mohammadi Roozbahani, M.; Sobhanardakani, S.; Karimi, H. and Sorooshnia, R., 2015. Natural and anthropogenic source of heavy metals pollution in the soil samples of an industrial complex; a case study. Iranian Journal of Toxicology. Vol. 9, pp: 1336-1341.
50
Muhammad, S.; Tahir Shah, M. and Khan, S., 2011. Health risk assessment of heavy metals and their source apportionment in drinking water of Kohistan region, northern Pakistan. Microchemical Journal. Vol. 98, pp: 334-43.
51
Naccari, C.; Macaluso, A.; Giangrosso, G.; Naccari, F. and Ferrantelli, V., 2014. Risk assessment of heavy metals and pesticides in honey from Sicily (Italy). Journal of Food Research. Vol. 3, pp: 107-117.
52
Nahar Jolly, Y.; Islam, A. and Akbar, S., 2013. Transfer of metals from soil to vegetables and possible health risk assessment. Springerplus. Vol. 2, No. 1, 385 p.
53
Ozcan, M.M. and AL Juhaimi, F.Y., 2012. Determination of heavy metals in bee honey with connected and not connected metal wires using inductively coupled plasma atomic emission spectrometry (ICP-AES). Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 184, pp: 2373-2375.
54
Perugini, M.; Manera, M.; Grotta, L.; Abete, M.C.; Tarasco, R. and Amorena, M., 2011. Heavy metal (Hg, Cr, Cd, and Pb) contamination in urban areas and wildlife reserves: Honeybees as bioindicators. Biological Trace Element Research. Vol. 140, pp: 170-176.
55
Pohl, P., 2009. Determination of metal content in honey by atomic absorption and emission spectrometries. Trends in Analytical Chemistry. Vol. 28, pp: 117-128.
56
Porrini, C.; Sabatini, A.G.; Girotti, S.; Ghini, S.; Medrzycki, P.; Grillenzoni, F.; Bortolotti, L.; Gattavecchia, E. and Celli, G., 2003. Honey bees and bee products as monitors of the environmental contamination. Apiacta. Vol. 38, pp: 63-70.
57
Rahman, S.H.; Khanam, D.; Adyel, T.; Shahidul Islam, M.; Ahsan, M.A. and Ahedul Akbor, M., 2012. Assessment of Heavy Metal Contamination of Agricultural Soil around Dhaka Export Processing Zone (DEPZ), Bangladesh: Implication of Seasonal Variation and Indices. Applied Sciences. Vol. 2, pp: 584-601.
58
Rashed, M.; El Haty, M.T. and Mohemed, S.M., 2009. Bee honey as environmental indicator for pollution with heavy metals. Toxicological & Environmental Chemistry. Vol. 91, pp: 389-403.
59
Rezaei Raja, O.; Sobhanardakani, S. and Cheraghi, M., 2016. Health risk assessment of citrus contaminated with heavy metals in Hamedan City, potential risk of Al and Cu. Environmental Health Engineering and Management Journal. Vol. 3, pp: 131-135.
60
Silva, L.; Sichul, R.; Videira, R.; Monteiro, A.P.; Valentao, P. and Andrade, P.B., 2009. Honey from Luso region (Portugal): physicochemical characteristics and mineral contents. Microchemical Journal. Vol. 93, pp: 73-77.
61
Skorbiłowicz, M.; Skorbiłowicz, E. and Cieśluk, I., 2018. Bees as bioindicators of environmental pollution with metals in an urban area. Journal of Ecological Engineering. Vol. 19, pp: 229-234.
62
Sobhanardakani, S., 2018. Non-carcinogenic risk assessment of heavy metals through exposure to the household dust (Case study: City of Khorramabad, Iran). Annals of Military and Health Sciences Research. Vol. 16, No. 4, e86594.
63
Sobhanardakani, S. and Ghoochian, M., 2016. Analysis of heavy metals in surface sediments from Agh Gel Wetland, Iran. Iranian Journal of Toxicology. Vol. 34, pp: 41-46.
64
Sobhanardakani, S. and Jafari, S.M., 2014. Assessment of heavy metals (Cu, Pb and Zn) in different tissues of common carp (Cyprinus carpio) caught from Shirinsu Wetland, Western Iran. J of Chemical Health Risks. Vol. 4, pp: 47-54.
65
Sobhanardakani, S. and Jamshidi, K., 2015. Assessment of metals (Co, Ni and Zn) content in the sediments of Mighan Wetland using geo-accumulation index. Iranian Journal of Toxicology. Vol. 30, pp: 1386-1390.
66
Sobhanardakani, S. and Kianpour, M., 2016. Heavy metal levels and potential health risk assessment in honey consumed in west of Iran. Avicenna Journal of Environmental Health Engineering. Vol. 3, e7795.
67
Sobhanardakani, S.; Tayebi, L. and Hosseini, S.V., 2018. Health risk assessment of arsenic and heavy metals (Cd, Cu, Co, Pb, and Sn) through consumption of Caviar of Acipenser persicus from Southern Caspian Sea. Environmental Science and Pollution Research. Vol. 25, pp: 2664-2671.
68
Soriano, M.A. and Fereres, E., 2003. Use of crops for in situ phytoremendiation of polluted soil following a toxic flood from a mine spill. Plant and Soil. Vol. 256, pp: 53-64.
69
Soylak, M. and Doghan, M., 2000. Lead concentration of dust sample from Nigde city Turkey. Fresenius Environmental Bulletin. Vol. 9, pp: 36-40.
70
Stecka, H.; Jedryczko, D.; Welna, M. and Pohl, P., 2014. Determination of traces of copper and zinc in honeys by the solid phase extraction pre-concentration followed by the flame atomic absorption spectrometry detection. Environmental monitoring & assessment. Vol. 186, pp: 6145-6155.
71
Tuzen, M. and Soylak, M., 2005. Trace heavy metal levels in microwave digested honey samples from MiddleAnatolia, Turkey. J of Food and Drug Analysis. Vol. 13, pp: 343-347.
72
Wang, A.S.; Angle, J.S.; Chaney, R.L.; Delorme, T.A. and Reeves, R.D., 2006. Soil pH effects on uptake of Cd and Zn by Thlaspi caerulescens. Plant & soil. Vol. 281, pp: 325-337.
73
Yang, ZH.; Lu, W.; Long, Y.; Bao, X. and Yang, Q., 2011. Assessment of heavy metals contamination in urban topsoil from Changchun City, China. Journal of Geochemical Exploration. Vol. 108, pp: 27-38.
74
Yoon, J.; Cao, X.; Zhou, Q. and Ma, L.Q., 2006. Accumulation of Pb, Cu, and Zn in native plants growing on a contaminated Florida site. Science of the Total Environment. Vol. 368, pp: 456-464.
75
Zaric, N.M.; Ilijevic, K.; Stanisavljevic, L. and Grzetic, I., 2017. Use of honeybees (Apis mellifera L.) as bioindicators for assessment and source appointment of metal pollution. Environmental Science and Pollution Research. Vol. 24, pp: 25828-25838.
76
Zhelyazkova, I., 2012. Honeybees bioindicators for environmental quality. Bulgarian Journal of Agricultural Science. Vol. 18, pp: 435-442.
77
ORIGINAL_ARTICLE
تنوع گونهای سفید بالکها (Hemiptera: Aleyrodidae) در بعضی مناطق استان مازندران
براساس مطالعات انجام شده روی فون سفید بالکهای (Hemiptera: Sternorrhyncha: Aleyrodidae) استان مازندران، 17 گونه سفید بالک شامل Acaudaleyrodes rachipora Singh, 1931، Aleurocanthus woglumi Ashby, 1915، Aleurolobus marlatti Quaintance, 1903،Aleurolobus moundi David & Subramaniam, 1976، Aleurolobus selangorensis Corbett, 1933، Aleyrodes singularis Danzig, 1966، Bemisia afer Priesner & Hosny, 1934، Bemisia giffardi Kotinsky, 1907، Bemisia tabaci Gennadius, 1889، Bulgarialeurodes cotesii Maskell, 1896، Dialeurodes citri Ashmead, 1885، Dialeurodes kirkaldyi Kotinsky, 1907، Parabemisia myricae Kuwana, 1927، Siphoninus phillyreae Haliday, 1835، Trialeurodes packardi Morrill, 1903، Trialeurodes vaporariorum Westwood, 1856 و Trialeurodes variabilis Quaintance, 1900 جمع آوری و شناسایی گردیدند. سفید بالک های شناسایی شده به 10 جنس و تماماً به زیرخانواده Aleyrodinae تعلق دارند. در پژوهش حاضر، علاوه بر شناسایی و معرفی سفید بالکها و گیاهان میزبان آن ها در استان مازندران، کلید شناسایی گونه های مهم سفیدبالک های ایران نیز ارائه گردیده است. در مجموع 16 خانواده گیاهی برای سفید بالک های مازندران شناسایی گردیده است که در این میان خانواده Rutaceae بیش ترین تعداد میزبان گیاهی را برای سفیدبالک های این پژوهش دارا می باشد. دو گونه Aleyrodes singularis و Trialeurodes packardi گزارش های جدیدی برای استان مازندران می باشند.
http://www.aejournal.ir/article_107376_9d4e368b1da1a06a6341f4bac5ad5a07.pdf
2020-06-21
311
320
10.22034/aej.2020.107376
سیستماتیک
گیاه میزبان
فون
کلید شناسایی
مازندران
حسن
قهاری
hghahari@yahoo.com
1
گروه گیاهپزشکی، واحد یادگار امام خمینی (ره)، دانشگاه آزاد اسلامی، شهرری، ایران
LEAD_AUTHOR
Abd-Rabou, S., Ghahari, H.; Myartseva, S.N. and Ruiz Cancino, E., 2013. Iranian Aphelinidae. Journal of Entomology & Zoology Studies. Vol. 1, No. 4, pp: 116-140.
1
Bink, F., 1979. Methods for mounting Aleyrodidae specimens. Entomologische Berichten. Vol. 39, pp: 158-160.
2
Bink-Moenen, R.M., 1983. Revision of the African whiteflies (Aleyrodidae). Monografieen van de Nederlandse Entomologische Vereniging, Amsterdam. Vol. 10, pp: 1-211.
3
Bink-Moenen, R.M., 1992. Whitefly from Medditerranean evergreen oaks. Systematic Entomology. Vol. 17, pp: 21-40.
4
Brown, P.A., 1997. A review of techniques used in the preparation, curation and conservation of microscope slides at The Natural History Museum, London. Special Supplement, The Curator. Vol. 10, 33 p.
5
Carver, M. and Reid, I.A., 1996. Aleyrodidae (Hemiptera: Sternorrhyncha) of Australia, systematic catalogue, host plant spectra, distribution, natural enemies and biological control. Division of Entomology Technical Paper. No. 37, 55 p.
6
Campbell, B.C.; Stephen-Campbell, J.D. and Gill, R.J., 1996. Origin and radiation of whiteflies: an initial molecular phylogenetic assessment, pp: 29-51. In: Gerling, D. and Mayer, R.T. (Eds.), Bemisia: 1995 - taxonomy, biology, damage, control and management. Andover, Intercept. 702 p.
7
Danzig, E.M., 1966. The whiteflies (Homoptera: Aleyrodidae) of the Southern Primor'ye (Soviet Far East). Entomologicheskoe Obozentie. Vol. 45, pp: 364-386. (English translation in Entomological Review. Washington. Vol. 45, pp: 197-209.
8
Danzig, E.M., 1969. On the fauna of the whiteflies (homoptera: Aleyrodidae) of Soviet central Asia and Kazakhstan. Entomologicheskoe Obozentie. Vol. 48, pp: 868-880 (English translation in Entomological Review. Washington. Vol. 48, pp: 552-5599.
9
De Barro, P.J., 1995. Bemisia tabaci biotype B: a review of its biology, distribution and control. Division of Entomology Technical Paper. No. 36, 58 p.
10
do Valle GE, Lourenção AL, Zucchi MI, Pinheiro JB, De Abreu AG., 2013. Population variability of Bemisia tabaci (Genn.) in different hosts. Genetics and Molecular Research. Vol. 12, pp: 4615-4624.
11
Gerling, D., 1990. Whiteflies: their bionomics, pest status, and management. Andover, Intercept. 348 p.
12
Ghahari, H. and Hatami, B., 2001. Faunistic and taxonomic surveys of whiteflies in Isfahan Province. Applied Entomology & Phytopathology. Vol. 69, No. 1, pp: 141-170.
13
Ghahari, H.; Mohebbi, H.R. and Parvanak, K., 2007a. Host plants of whiteflies in many regions of Iran. Plant and Ecosystem. Vol. 9, pp: 1-14 (in Persian).
14
Ghahari, H.; Abd-Rabou, S.; Ostovan, H. and Samin, N., 2007b. Whiteflies (Homoptera: Aleyrodidae) and their host plants in Golestan province, Iran. Plant and Ecosystem. Vol. 12, pp: 17-28 (in Persian).
15
Ghahari, H.; Abd-Rabou, S.; Zahradnik, J. and Ostovan, H., 2009. Annotated catalogue of whiteflies (Hemiptera: Sternorrhyncha: Aleyrodidae) from Arasbaran, Northwestern Iran. J of entomology & nematology. Vol. 1, No. 1, pp: 7-18.
16
Ghahari, H.; Abd-Rabou, S. and Huang, J., 2013. Species diversity of whiteflies (Hemiptera: Aleyrodidae) from Lorestan province, Iran. Wuyi Science Journal. Vol. 29, pp: 128-143.
17
Jesudasan, R.W.A. and David, B.V., 1991. Taxonomic studies on Indian Aleyrodidae (Insecta: Homoptera). Oriental Insects. Vol. 25, pp: 231-434.
18
Jones, D.R., 2003. Plant viruses transmitted by whiteflies. European Journal of Plant Pathology. Vol. 109, pp: 195-219.
19
Lapidot, M. and Polston, J.E., 2010. Biology and epidemiology of Bemisia-vectored viruses, pp: 227-345. In: Stansly, P.A. and Naranjo, S.E., (Eds.), Bemisia: Bionomics and management of a global pest. Dordrecht, the Netherlands: Springer. 540 p.
20
Liorens-Climent, J.M. and Garrido Vivas, A., 1992. Homoptera III. Moscas blancas y sus control biologico. Alicante, Pisa Ediciones. 203 p.
21
Marsaro Junior, A.L.; Racca Filho, F.; Raga, A. and Antonio Costa, A., 2015. New records of whiteflies (Hemiptera: Aleyrodidae) in Rio Grande do Sul State, Brazil. IDESIA. Vol. 33, No. 1, pp: 143-145.
22
Martin, J.H., 1985. The whitefly of New Guinea (Homoptera: Aleyrodidae). Bulletin of British Museum (Natural History). Vol. 50, No. 3, pp: 303-351.
23
Martin, J.H., 1987. An identification guide to common whitefly pest species of the world (Homoptera: Aleyrodidae). Tropical Pest Management. Vol. 33, No. 4, pp: 298-322.
24
Martin, J.H.; Aguiar, A.M.F. and Pita, M.T., 1996. Aleyrodidae of Madeira - descriptions of three new species and notes on a pan, Mediterranean species of Aleurotrachelus. J of Natural History. Vol. 30, No. pp: 113-125.
25
Martin, J.H., 1996. Neotropical whiteflies of the subfamily Aleyrodicinae established in the western Palearctic. Journal of Natural History. Vol. 30, pp: 1849-1859.
26
Martin, J.H., 1999. The whitefly fauna of Australia. A taxonomic account and identification guide. CSIRO Entomology Technical Paper. No. 38, 197 p.
27
Martin, J.H.; Mifsud, D. and Rapisarda, C., 2000. The whiteflies of Europe and the Mediterranean Basin. Bulletine of Entomological Research. Vol. 90, pp: 407-448.
28
Modarres Awal, M., 2012. Family Aleyrodidae (Homoptera), pp: 185-187. In: Modarres Awal, M., (ed.), List of agricultural pests and their natural enemies in Iran. Third edition. Ferdowsi University of Mashhad Press. 759 p.
29
Mound, L.A., 1965. An introduction to the Aleyrodidae of western Africa (Homoptera). Bulletin of the British Museum (Natural History) (Entomology). Vol. 17, pp: 113-160.
30
Mound, L.A., 1966. A revision of the British Aleyrodidae (Hemiptera: Homoptera). Bulletin of the British Museum (Natural History) (Entomology). Vol. 17, pp: 399-428.
31
Mound L.A. and Halsey S.H., 1978. Whitefly of the World. A systematic catalogue of the Aleyrodidae (Homoptera) with host plant and natural enemy data. British Museum (Natural History), John Wiley & Sons. 340 p.
32
Romba, R. and Gnankiné, O., 2018. Comparative biology parameters of Q1 and Q3 genotypes of Bemisia tabaci MED (Hemiptera: Aleyrodidae) on two host plants in Burkina Faso, West Africa. African Entomology. Vol. 26, No. 1, pp: 1-8.
33
Shahbazvar, N.; Sahragard, A.; Manzari, S.; Hosseini, R. and Hajizadeh, J., 2010. A faunal study of whiteflies (Hemiptera: Aleyrodidae) and their parasitoids in Guilan province, Iran. Entomofauna. Vol. 31, No. 17, pp: 269-284.
34
Uulu, T.E.; Rifat Ulusoy, M. and Filiz Çalışkan, A., 2017. Determination of whitefly (Hemiptera: Aleyrodidae) species from South Kyrgyzstan. Manas Journal of AgricultureVeterinary and LifeSciences. Vol. 7, No. 2, pp: 13-19.
35
Wang, P.; Sun, D.B.; Qiu, B.L. and Liu, S.S., 2011. The presence of six cryptic species of the whitefly Bemisia tabaci complex in China as revealed by crossing experiments. Insect Science. Vol. 18, pp: 67-77.
36
Zarei, A. and Asgari, Sh., 2013. A study on the whiteflies (Hemiptera: Aleyrodidae) and their parasitoids in southern Tehran, Iran. Calodema. Vol. 267, pp: 1-4.
37
Zarrabi, M., 1991. The aleyrodids fauna of Fars province. M.Sc thesis of Shiraz University. 74 p.
38
ORIGINAL_ARTICLE
برخی ویژگی های زیستی میگو موزی (Penaeus merguiensis) در مناطق حفاظت شده حرا در تنگه خوران
این مطالعه با هدف بررسی برخی جنبه های زیستی میگو موزی Penaeus merguiensis در مناطق حفاظت شده حرا در تنگه خورخوران انجام شد. نمونه برداری به وسیله چهار روش صید (ترال، مشتا، خوربند و پاکشی) از شهریور 1395 تا شهریور 1396 انجام شد که در مجموع تعداد 745 میگو موزی شامل 448 ماده و 297 نر صید شد. بر اساس نتایج این پژوهش، میانگین، بیشینه و کمینه طول کاراپاس در جنس نر به ترتیب 20/66، 43 و 5 میلی متر و هم چنین در جنس ماده به ترتیب 21/37، 40 و 8 میلی متر به دست آمد. نتایج بررسی فراوانی نسبت جنسی در ماه های مختلف وجود تفاوت معنی داری در نسبت فراوانی جنس های نر و ماده میگو موزی در طی دوره مورد بررسی نشان داد. براساس پارامترهای رگرسیونی برازش شده، رابطه طول- وزن در جنس نر مطابق رابطه W= 0.0009 L2.748 و در جنس ماده مطابق رابطه W= 0.0008 L 2.807 با ضریب تشخیص 0/97<R2 برای هر دو جنس محاسبه شد. تخمین پارامترهای رشد با استفاده از آنالیز رگرسیون حداقل مربعات مشخص کرد که رشد میگوی موزی در منطقه حفاظت شده حرا (تنگه خورخوران) به صورت معادله های زیر به ترتیب برای جنس های ماده و نر است: {(CL= 42{ 1-e -1.7( t-0.798 و {(CL= 33{ 1-e -1.43( t-0.91
http://www.aejournal.ir/article_106631_a9ff73770c966ed60e5435398e54e191.pdf
2020-06-21
321
328
10.22034/aej.2020.106631
میگو موزی
مناطق حفاظت شده حرا
تنگه خوران
رابطه طول و وزن
پارامترهای رشد
پریما
حاجی علیزاده
parimaalizadeh@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
محسن
صفائی
msn_safaie@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
مرتضی
صلاحی
morteza.salahi@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
سید حسن
هاشمی
s.hassanhashemi@yahoo.com
4
اداره کل حفاظت محیط زیست استان هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
صفائی، م. و کامرانی، ا.، 1377. گزارش نهایی پروژه اعلام زمان آزادسازی و خاتمه صید و تعیین بیوماس میگو تجاری استان هرمزگان در سال 1377. موسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران. مرکز تحقیقاتی دریای عمان. 69 صفحه.
1
صفائی، م.، 1384. ﭘﻮﻳﺎﻳﻲ ﺷﻨﺎﺳﻲ ﺟﻤﻌﻴﺖ ﻣﻴﮕﻮ ﻣﻮﺯﻱ (Penaeus merguiensis) ﺩﺭ ﺁب های ﺳﺎﺣﻠﻲ ﺍﺳﺘﺎﻥ ﻫﺮﻣﺰﮔﺎﻥ. پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. شماره 67، صفحات 50 تا 61.
2
صفائی، م.، 1391. پویایی شناسی جمعیت میگوهای غالب در منطقه شمال غربی جزیره قشم. مجله علمی شیلات ایران. سال 21، شماره 3، صفحات 85 تا 98.
3
عرفانی، م.؛ دانه کار، ا. و اردکانی، ط.، 1387. بررسی ارتباط عناصر غذایی در سرشاخه ها و رسوب جنگل های مانگرو در خلیج گواتر استان سیستان و بلوچستان. مجله پژوهشی تحقیقات حمایت و حفاظت جنگل ها و مراتع ایران. جلد 6، شماره 2، صفحات 118 تا 137.
4
مومنی، م.؛ دقوقی، ب.؛ درویشی، م.؛ پهپوری، ع.؛ خواجه نوری، ک.؛ صفائی، م.؛ صادقی، م.ر.؛ غریب نیا، م.؛ مقصودی، ع.و قائینی، ا.، 1389. بررسی مسیر حرکت و محاسبه میزان رشد میگو موزی Penaeus merguiensis رهاسازی شده در آب های خلیج فارس و دریای عمان (استان هرمزگان). موسسه تحقیقات شیلات. 108صفحه.
5
مومنی، م.؛ کامرانی، ا.؛ صفائی، م. و کی مرام، ف.، 1396 . توده زنده و پراکنش میگو موزی 1888 Penaeus merguiensis De Man درخلیج فارس. محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 2، صفحات 215 تا 222.
6
Bagenal, T.B., 1987. Method for assessment of fish production in freshwater, Third edition, Blackwell Scientific Publication, XVT. 365 p.
7
Bhadra, S. and Biradar, R.S., 2000. Population dynamics of penaeid prawn Penaeus merguiensis off Mumbai coast. Indian Journal of Fish Assessment. Vol. 27, pp: 65-77.
8
Carpenter, K.E. and Niem, V.H., 1998. FAO species identification guide for fishery purposes, The living marine resources of the Western Central Pacific. Vol. 2. Cephalopods, crustaceans, holothurians and sharks. Rome, FAO. pp: 687-1396.
9
Carter, R.W.G., 1988. Coastal Environments: An Introduction to the Physical, Ecological and Cultural Systems of Coastlines, Academic Press, London, UK. 617 p.
10
Enin, U.I.; Lowenberg, U. and Kunzel, T., 1996. Population dynamics of the estuarine prawn (Nematopalaemon hastatus aurivillus, 1989) off the southeast coast of Nigeria, Fisheries Research. Vol. 26, pp: 17-35.
11
FAO, Food and Agriculture Organization of the United Nations. 2007. The world's mangroves 1980- 2005. FAO Forestry Paper. Vol. 153, pp: 1-6.
12
Fischer, W. and Bianchi, G., 1984. FAO species identification sheets for fishery purposes. Western Indian Ocean (Fishing Area 51). Prepared and printed with the support of the Danish International Development Agency (DANIDA). Food and Agriculture Organization of the united nation. Rome. pp: 1-6.
13
Froese, R., 2006. Cube law, condition factor and weight length relationships: history, meta-analysis and recommendations. J. Appl. Ichthyol. Vol. 22, pp: 241-253.
14
Garcia, S.M. and Le Reste, L., 1981. Life cycles, dynamics, exploitation and management of coastal penaeid shrimp stocks. FAO Fisheries Technical Paper. No. 203. pp: 1-215.
15
Garcia, S., 1988. Tropical penaeid prawns, pp: 219-249. In: Gulland, J.A., (ed.) Fish population dynamics: the implications for management, Chichester, John Wiley and Sons Ltd. 422 p.
16
Juliano, S.A., 2007. Population Dynamics. Journal of the American Mosquito Control Association. Vol. 23, No. 2, pp: 265-275.
17
King, M., 1995. Fisheries biology assessment and management Fishing. News Books. Vol 3, No 5, pp: 151-160.
18
Mane, S.J. and Deshmukh, V.D., 2011. Age and growth studies of banana prawn, Penaeus merguiensis de Man from Maharashtra waters. Journal of Marine Biology Associations. India. Vol. 53, No. 2, pp: 184-188.
19
Manson, F.J.; Loneragan, N.R.; Harch, B.D.; Skilleter, G.A. and Williams, L., 2005. A broad scale analysis of links between coastal fisheries production and mangrove extent: A case study for northeastern Australia. Fish Research. Vol. 74, pp: 69-85.
20
Mathews, C.P.; Al-Hossaini, M.; Abdul Ghaffar, A.R. and Al-Shoushni, M., 1987. Assessment of short-lived stocks with special reference to Kuwait’s shrimp fisheries: a contrast of results obtained from traditional and recent size-based techniques. D ICLARM Conf Proc 13, pp: 147-166. In: D Pauly, GR Morgan, editors. Length-based methods in fisheries research, ICLARM Conference Proceeding 13, Manila/Safat: International Center for Living Aquatic Resources Management/Kuwait Institute for Scientific Research. 468 p.
21
Mayart, A., 1970. Allometrie et taxinomie. Revue de Statistique Appliquée. Vol. 18, pp: 47-58.
22
Momeni, M.; Kamrani, E.; Safaie M. and Kaymaram, F., 2018. Population structure of banana shrimp, Penaeus merguiensis De Man, 1888 in the Strait of Hormoz, Persian Gulf. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 17, pp: 47-66.
23
Niamaimandi, N.; Arshad, A.; Daud, S.K.; Saed, R.C. and Hasanzadeh Kiabi, B., 2007. Population dynamic of green tiger prawn, Penaeus semisulcatus (De Haan) in Bushehr coastal waters, Persian Gulf. Fisheries Research. Vol. 86, No. 2-3, pp: 105-112.
24
Pauly, D., 1983. Some simple methods for the assessment of tropical fish stocks. Food and Agriculture Organization of the United Nations, FAO Fisheries Technical Paper. Vol. 234, Rome, 52 p.
25
Pauly, D. and Caddy, J.F., 1985. Modification of bhattacharya’s method for the analysis of mixtures of normal distributions. FAO Fisheries and Aquaculture Circulars. Vol. 781, 16 p.
26
Safaie, M., 2015. Population dynamics for banana prawns, Penaeus merguiensis de Man, 1888 in coastal waters off the northern part of the Persian Gulf, Iran. Tropical Zoology. Vol. 28, No. 1, pp: 1-14.
27
Safaie, M., 2017. Population dynamics of kiddy shrimp, Parapenaeopsis stylifera (H. Milne Edwards, 1837) in the north-west of Qeshm Island, Iran. Tropical Zoology. pp: 1-15.
28
Sparre, P. and Venema, S.C., 1998. Introduction to tropical fish stock assessment, Part 1. Manual. FAO Fisheries Technical Paper, No. 306.1, Rev. 2. Rome. Food and Agriculture Organization of the United Nations. 407 p.
29
Vance, D.J.; Haywood, M.D.E.; Heales, D.S.; Kenon, R.A.; Loneragan, N.R. and Pendrey, R.C., 2002. Distribution of juvenile penaeid prawns in a mangrove forest in a tropical Australian estuary, with particular reference to Penaeus merguiensis. Marine Ecology Progress Series. Vol. 228, pp: 167-177.
30
Ysebaert, T.; Meire, P.; Herman, P.M.J. and Herman, V., 2002. Macrobenthic species response surfaces along estuarine gradients: Prediction by logistic regression. Mar. Ecol. Prog. Ser. Vol. 225, pp: 79-95.
31
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه خصوصیات زیستی کیتوزان استخراج شده از ضایعات میگوی پرورشی پا سفید غربی (Litopenaeus vannami)، اسکوئید هندی (Uroteuthis duvaucelii) و خرچنگ گرد (Portunus pelagicus)
در این تحقیق با روش های مختلف از ضایعات سه منبع آبزی، کیتین و کیتوزان استخراج و سپس برخی خصوصیات زیستی آن ها مورد بررسی قرار گرفت. در استخراج اسیدی کیتوزان حاصل از پوسته میگو 0/2 گرم و پوسته خرچنگ 0/15 گرم به ازای هر 5 گرم پوسته خشک حاصل آمد. در استخراج اختصاصی برای خرچنگ بیش ترین میزان کیتوزان از خرچنگ به میزان 0/4 گرم و در رتبه بعدی میگو با 0/3 گرم گزارش گردید. تنها در استخراج اختصاصی اسکوئید بود که 0/3 گرم کیتوزان به ازای هر 5 گرم کاتل داخلی خشک شده اسکوئید به دست آمد. وزن ملکولی متوسط کیتوزان از طریق اندازه گیری ویسکوزیته ذاتی تعیین شد، که بیش ترین وزن مولکولی مربوط به پوسته میگو با 18039 گرم/مول و کم ترین مربوط به کاتل داخلی اسکوئید با 1668 گرم/مول است. بالاترین انحلال در آب را کیتوزان حاصل از پوسته اسکوئید هندی 81/92% نشان داد. مطالعه طیف FT-IR نشان داد که بالاترین درصد داستیلاسیون نیز مربوط به کیتوزان اسکوئید با 92/39% می باشد. ارزیابی SEM نیز به منظور مطالعه ساختار مولکولی کیتوزان استخراجی از سه منبع مختلف با سه دقت متفاوت انجام شد.
http://www.aejournal.ir/article_107381_af15b86328a093f298c6b1b646a41b22.pdf
2020-06-21
329
338
10.22034/aej.2020.107381
کیتوزان
وزن مولکولی
FT-IR
SEM
زیست فعال
هومن
تیموری
teimouri.training@gmail.com
1
گروه عمل آوری فرآورده های شیلاتی دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
LEAD_AUTHOR
مسعود
رضائی
2
گروه عمل آوری فرآورده های شیلاتی دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
AUTHOR
مهدی
طبرسا
3
گروه عمل آوری فرآورده های شیلاتی دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
AUTHOR
خاکشور، م.ص. و پازوکی، ج.، 1393 استخراج ترکیبات کیتین و کیتوزان موجود در اسکلت خارجی خرچنگ شناگر. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 6، شماره 1، صفحات 12 تا 18.
1
خاکشور، م.ص.؛ پازوکی، ج.؛ طادی، ف. و طاهری، س.، 1391. مقایسه میزان کیتین و کیتوزان استخراج شده در بین جنس های نر و ماده، اندام های مختلف و فصول متفاوت صید خرچنگ Portunus Segnis، خلیج فارس. همایش ملی فرآورده های طبیعی و گیاهان داروئی بجنورد. دانشگاه علوم پزشکی خراسان شمالی.
2
خنافری، آ. و صنعتی کوپایی، ش.، 1388. تاثیر درجه داستیلاسیون کیتوزان بر مهار رشد سودوموناس آئروژینوزا بیمارستانی. مجله پژوهشی دانشگاه علوم پزشکی مازندران. دوره 19، شماره 71، صفحات 10 تا 19.
3
صداقت، ف.؛ یوسف زادی، م.؛ تویسرکانی، ح. و نجفی پور، س.، 1394. معدنی زدائی و استیل شیمیایی ضایعات میگوی موزی Penaeus merguiensis به منظور استخراج کیتین و کیتوزان. مجله زیست شناسی دریا. دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. دوره 7، شماره 28، صفحات 1 تا 12.
4
طاهری، ع.؛ سیفان، ا. و جلالی نژاد، س.، 1392. اثر ضدمیکروبی و ضدقارچی کیتوزان محلول در اسید و آب پوسته میگوی سفید هندی. مجله دانشگاه علوم پزشکی فسا، دوره 3، شماره 1، صفحات 49 تا 55.
5
غیاث الدین، ع.؛ شجاع الساداتی، س.ع. و واشقانی فراهانی، ا.، 1390. اصلاح و بهینه سازی فرایند استخراج کیتین از پوست میگو. نشریه شیمی و مهندسی شیمی ایران. دوره 30، شماره 1، صفحات 1 تا 9.
6
منگلی زاده، ن.؛ جعفرزاده حقیقی فرد، ن.؛ تکدستان، ا. و هرمزی نژاد، م.، 1393. ویژگی های فیزیکوشیمیایی زیست پلیمر کیتوزان استخراجی از پوست میگو. مجله علوم و تکنولوژی پلیمر. دوره 27، شماره 6، صفحات 371 تا 380.
7
موسوی نسب، م.؛ موسوی نسب، س.؛ مصباحی، غ. و جمالیان، ج.، 1393. ارزیابی خصوصیات کیفی کیتوزان تولیدی از پوسته میگو و کیتوزان تجاری پوسته خرچنگ. فصلنامه علوم و صنایع غذایی ایران. دوره 11، شماره 45، صفحات 163 تا 174.
8
یعقوبی، ن.؛ میرزاده، ح. و هرمزی، ف.، 1381. بهینه سازی استخراج کیتین و تهیه کیتوزان از پوست میگو: بررسی عوامل موثر بر واکنش استیل زدائی کیتین. مجله علوم و تکنولوژی پلیمر. دوره 15، شماره 1، صفحات 55 تا 63.
9
Abdelmalek, B.E.; Sila, A.; Haddar, A.; Alibougatef, A. and Ayadi, M.A., 2017. β-chitin and chitosan from squid gladius: Biological activities of chitosan and its application as clarifying agent for apple juice.International Journal of Biological Macromolecules. Vol. 17, pp: 505-526.
10
Alder, E., 2000. Chitin natural macromolecules. J. Chem.Of Macroinolecules.Internet.df. http://www.seaborne,com/ chitinzuide.htm. 10.p.
11
Anderson, C.G.; Pablo, N. and Romo, C., 2001. Antartic krill (Euphausia superba) as a source of chitin and chitosan, in proceedings of the first International conference on chitin/chitosan.
12
AOAC. 2002. Official methods of analysis Association of Official Analytical Chemistry, 17th ed. The Association of Official Analytical Chemistry Inc: Washington, DC.
13
Brugnerotto, J.; Heux, L.; Desbrieres, J.; Versali, M.F.; Rinaudo, M., 2000. Solid state NMR for determination of degree of acetylation of chitin and chitosan. Biomacro molecules. Vol. 1, pp: 746-751.
14
Chandampai, A.; Singhpibulporn, N. and Faroongsarng, D., 2004. Preparation and physico-chemical characterization of chitin and chitosan from the pens of the squid species, Loligo lessoniana and Loligo formosana. Journal of Carbohydrate Polymers. Vol. 58, pp: 467-474.
15
Demir, D.; Ofkeli, F.; Ceylan, S. and Bolgen, N., 2016. Extraction and Characterization of Chitin and Chitosan from Blue Crab and Synthesis of Chitosan Cryogel Scaffolds. JOTCSA. Vol. 3, No. 3, pp: 131-144.
16
Fernandez-Kim, S.O., 2004. Physicochemical and functional properties of crawfish chitosan as affected by different processing protocols (Master’s thesis, Louisiana State University and Agricultural and Mechanical College, Baton Rouge, LA.
17
Hajjia, S.; Islem, Y.; Olfa, G.B.; Rachid, H.; Marguerite, R.; Moncef, N. and Kemel, J., 2014. Structural differences between chitin and chitosan extracted fromthree different marine sources. Vol. 65, pp: 298-306.
18
Hein, S.; Chuen, N.; Chandrkrachang, S. and Stevens, F., 2001. A systematic approach to quality assessment system of chitosan, in Asian Institute of TechnologyInternet pdf <http://ww.Southrnblue.Com/chitosan» Bangkok. 6 p.
19
Hossain, M.S.and Iqba, A., 2014. Production and characterization of chitosan from shrimp waste. Journal of Bangladesh Agril. Univ. Vol. 12, No. 1, pp: 153-160.
20
Kurita, K.; Tomita, K.; Tada, T.; Ishii, S.; Nishimura, S.I. and Shimoda, K., 1993. Squid chitin as a potential alternative chitin source: Deacetylation behavior and characteristic properties. Journal of Polymer Science Part A: Polymer Chemistry. Vol. 31, No. 2, pp: 485-491.
21
Liang, S.; Sun, Y. and Dai, X., 2018. A Review of the Preparation, Analysis and Biological Functions of Chitooligosaccharide. International Journal of Molecular Sciences. Vol. 19, No. 8, pp: 2197.
22
Madihally, S.V. and Matthew, H.W.T., 1999. Porous chitosan scaffolds for tissue engineering. Biomaterials. Vol. 20, No. 12, pp: 1133-1142.
23
Mahmoud, N.S.; Ghaly, A.E. and Arab, F., 2007. Unconventional Approach for Demineralization of Deproteinized Crustacean Shells for Chitin production. Am J Biochem Biothec. Vol. 3, No. 1, pp: 1-9.
24
Negrea, P.; Caunii, A.; Sarac, I. and Butnariu, M., 2015. Digest Journal of Nanomaterials and Biostructures. Vol.10, No. 4, pp: 1129-1138.
25
Pariser, E.R. and Lombardi, D.P., 2004. A guide to the research literaturechitin. Source book.Plenum press, New York. USA. 560 p.
26
Peberdy, J.F., 2010. Biotechnological approaches to the total utilisation of crustacean shellfish waste. In Euro. Commission. Supported. STD. 3 projects (1992-1995), Internet, pdf: http://user. Chollian.net/~Chitin. 5 p.
27
Peplow, A.J.; Appledorf, H. and Koburger, J.A., 1973. Effect of boiling, frying, microwave, heating and canning on the proximate, mineral and thiamin content of shrimp. Florida agricultural expriment statation series. Vol. 935, pp :94-101.
28
Sarbon, N.M.; Sandanamsamy, S.; Kamaruzaman, S.F.S. and Ahmad, F., 2014. Chitosan extracted from mud crab (Scylla olivicea) shells: physicochemical and antioxidant properties. Journal of Food Science and Technology. Vol. 52, No. 7, pp: 4266-4275.
29
Seaborne. 2001. A netural product for the 21th century, in Guide to Chitin, Internet Pdf: URL http. VAvww.Seaborne. Com/Chitin2uide.htm. 5 p.
30
Tolaimate A.; Rhazi, M.; Alagui, A.; Desbrières, J. and Rinaudo, M., 2008. Valorization of waste products from fishing industry by production of the chitin and chitosan Phys. Chem. News. Vol. 42, pp: 120-127.
31
Walton, A.G. and Rudall, K.M., 2001. Bioploymers in Analysis of Chitin and Chitosan, (Anthonsen, P. and Ford, S., Eds) Elsevier, London. 276 p.
32
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی حذف تولوئن از محلول های آبی با استفاده از نانوکیتوزان استخراج شده از پوسته میگو: ایزوترم و سینتیک جذب
تولوئن با فرمول شیمیایی C6H5CH3 یکی از ترکیبات سمی و سرطان زا محصولات نفتی و از مهم ترین عوامل آلاینده آب است. هزینه بالا و کارایی پایین برخی فرایندهای تصفیه محدودیت هایی را در زمینه حذف این ترکیبات به وجود آورده است. در مطالعه حاضر فرایند جذب سطحی تولوئن از محلول های آبی به وسیله جاذب نانوکیتوزان استخراج شده از پوسته میگو به عنوان یک جاذب طبیعی، ارزان قیمت و سازگار با محیط زیست بررسی شد. نانو کیتوزان از شرکت سیگما آلدریچ آمریکا تهیه شد. برای تعیین غلظت تولوئن، از دستگاه اسپکتروفتومتر UV-Vis Array مدل 2015Photonix Ar در طول موج 206 نانومتر استفاده شد. به منظور تعییین شرایط بهینه برای ظرفیت جذب تولوئن توسط نانوکیتوزان اثر پارامترهای مختلف pH در محدوده 3 تا 8 و زمان تماس در محدوده 5 تا 120 دقیقه در مقیاس آزمایشگاهی در سیستم ناپیوسته بررسی شد. مقادیر بهینه برای این پارامترها به ترتیب 5 و زمان تعادل 35 دقیقه به دست آمد. مدل فروندلیچ با 0/92=R2 مطابقت بیش تری با داده های تعادلی جذب تولوئن داشت. از مدل سینتیکی شبه درجه اول و شبه درجه دوم جهت بررسی سینتیک واکنش استفاده شد که نتایج بیانگر این بود که مدل شبه درجه دوم با ضریب همبستگی 0/99=R2 از برازش بهتری با داده های تجربی برخوردار است. نتایج نشان داد که نانوکیتوزان قابلیت بسیار خوبی برای استفاده در فرایند حذف تولوئن از محلول های آبی دارند.
http://www.aejournal.ir/article_107434_eb143ce568ee1b5425d7d6aa8bff2a68.pdf
2020-06-21
339
346
10.22034/aej.2020.107434
تولوئن
نانوکیتوزان
آلودگی نفتی
جذب سطحی
رقیه
مطلبی
donyamotallebi@gmail.com
1
گروه تنوع زیستی و آلودگی های محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
حسن
رضائی
hassanrezaei1979@gmail.com
2
گروه تنوع زیستی و آلودگی های محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
علی اکبر
هدایتی
marinebiology1@gmail.com
3
گروه تولید و بهره برداری آبزیان، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
علی
کرد رستمی
alikordrostami@yahoo.com
4
گروه شیمی، شرکت ملی پخش فراورده های نفتی منطقه گلستان، گرگان، ایران
AUTHOR
اخلاصی، ل.؛ یونسی، ح.ا.؛ مهربان، ز. و بهرامی فر، ن.، 1392. سنتز نانوذرات کیتوسان و کاربرد آن در جذب یون های فلزی سرب از محلول های آبی. دو ماهنامه آب و فاضلاب. دوره 24، شماره 1، صفحات 10تا 18.
1
شامحمدی، ش.، 1395. نقدی بر تئوری مدل ایزوترم جذب لانگمویر در محیط های آبی. مجله پژوهش آب ایران. دوره 10، شماره 23، صفحات 45 تا 52.
2
Ahmed, M.J.; Theydan, S.K. and Mohammed, A.H.A., 2012. Adsorption of Phenol and P-Nitro Phenol onto Date Stones: Equilibrium Isotherms, Kineticsand Thermodynamics Studies. Journal of Engineering. Vol. 18, No. 6, pp: 743-761.
3
Behnamfard, A. and Salarirad, M.M., 2009. Equilibrium and kinetic studies on free cyanide adsorption from aqueous solution by activated carbon. Journal of hazardous materials. Vol. 170, No. 1, pp: 127-133.
4
Chen, L.; Si, Y.; Zhu, H.; Jiang, T. and Guo, Z., 2016. A study on the fabrication of porous PVDF membranes by in-situ elimination and their applications in separating oil/water mixtures and nano-emulsions. Journal of Membrane Science. Vool. 520, pp: 760-768.
5
Corami, A.; Mignardi, S. and Ferrini, V., 2008. Cadmium removal from single-and multi-metal (Cd+ Pb+ Zn+ Cu) solutions by sorption on hydroxyapatite. Journal of Colloid and Interface Science. Vol. 317, No. 2, pp: 402-408.
6
Crisafully, R.; Milhome, M.A.L.; Cavalcante, R.M.; Silveira, E.R.; De Keukeleire, D. and Nascimento, R.F., 2008. Removal of some polycyclic aromatic hydrocarbons from petrochemical istewater using low-cost adsorbents of natural origin. Bioresource technology. Vol. 99, No. 10, pp: 4515-4519.
7
El-Sayed, Y. and Bandosz, T.J., 2004. Adsorption of valeric acid from aqueous solution onto activated carbons: role of surface basic sites. Journal of colloid and interface science. Vol. 273, No. 1, pp: 64-72.
8
Freundlich, H.M.F., 1906. Uber die Adsorption in Losungen. Zeitschrift für Physikalische Chemie. Vol. 57, pp: 385-470.
9
Jabbar, Z.; Angham, A. and Sami, G.H.F., 2014. Removal of azo dye from aqueous solutions using chitosan. Oriental journal of chemistry. Vol. 30, No. 2, pp: 571-575.
10
Hameed, B.H.; Ahmad, A.A. and Aziz, N., 2007. Isotherms, kinetics and thermodynamics of acid dye adsorption on activated palm ash. Chemical Engineering Journal. Vol. 133, No. 1-3, pp: 195-203.
11
He, J.; Lu, Y. and Luo, G., 2014. Ca (II) imprinted chitosan microspheres: an effective and green adsorbent for the removal of Cu (II), Cd (II) and Pb (II) from aqueous solutions. Chemical Engineering Journal. Vol. 244, pp: 202-208.
12
Ho, Y.S. and McKay, G., 1999. Pseudo-second order model for sorption processes. Process biochemistry. Vol. 34, No. 5, pp: 451-465.
13
Langmuir, I., 1916. The constitution and fundamental properties of solids and liquids. Part I. Solids. Journal of the American chemical society. Vol. 38, No. 11, pp: 2221-2295.
14
Lin, K.; Pan, J.; Chen, Y.; Cheng, R. and Xu, X., 2009. Study the adsorption of phenol from aqueous solution on hydroxyapatite nanopowders. Journal of Hazardous Materials. Vol. 161, No. 1, pp: 231-240.
15
Mohammed, J.; Nasri, N.S.; Zaini, M.A.A.; Hamza, U.D. and Ani, F.N., 2015. Adsorption of benzene and toluene onto KOH activated coconut shell based carbon treated with NH3. International Biodeterioration and Biodegradation. Vol. 102, pp: 245-255.
16
Naghizadeh, A.; Nasseri, S.; Rashidi, A.M.; Rezaei Kalantary, R.; Nabizadeh, R. and Mahvi, A.H., 2013. Adsorption kinetics and thermodynamics of hydrophobic natural organic matter (NOM) removal from aqueous solution by multi-wall carbon nanotubes. Water Science and Technology: Water Supply. Vol. 13, No. 2, pp: 273-285.
17
Ong, S.T.; Lee, C.K. and Zainal, Z., 2007. Removal of basic and reactive dyes using ethylenediamine modified rice hull. Bioresource technology. Vol. 98, No. 15, pp: 2792-2799.
18
Qin, C.; Huang, X.; Zhao, J.; Huang, J.; Kang, Z. and Dang, X., 2017. Removal of toluene by sequential adsorption-plasma oxidation: Mixed support and catalyst deactivation. Journal of Hazardous Materials. Vol. 334, pp: 29-38.
19
Rezaei, H., 2016. Biosorption of chromium by using Spirulina sp. Arabian Journal of Chemistry. Vol. 9, No. 6, pp: 846-853.
20
Salame, I.I. and Bandosz, T.J., 2001. Surface chemistry of activated carbons: combining the results of temperature programmed desorption, Boehm, and potentiometric titrations. Journal of colloid and interface science. Vol. 240, No. 1, pp: 252-258.
21
Soni, U.; Bajpai, J.; Singh, S.K. and Bajpai, A.K., 2017. Evaluation of chitosan-carbon based biocomposite for efficient removal of phenols from aqueous solutions. Journal of water process engineering. Vol. 16, pp: 56-63.
22
Suman, K.A.; Gera, M. and Jain, V.K., 2015. A novel reusable nanocomposite for complete removal of dyes, heavy metals and microbial load from water based on nanocellulose and silver nano-embedded pebbles. Environmental technology. Vol. 36, No. 6, pp: 706-714.
23
Vadivelan, V. and Kumar, K.V., 2005. Equilibrium, kinetics, mechanism, and process design for the sorption of methylene blue onto rice husk. Journal of Colloid and Interface Science. Vol. 286, No. 1, pp: 90-100.
24
Wibowo, N.; Setyadhi, L.; Wibowo, D.; Setiawan, J. and Ismadji, S., 2007. Adsorption of benzene and toluene from aqueous solutions onto activated carbon and its acid and heat treated forms: influence of surface chemistry on adsorption. Journal of Hazardous Materials. Vol. 146, No. 1, pp: 237-242.
25
Xie, Y.; Li, S.; Wang, F. and Liu, G., 2010. Removal of perchlorate from aqueous solution using protonated cross linked chitosan. Chemical Engineering Journal. Vol. 156, No. 1, pp: 56-63.
26
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی اقتصادی و تولید میگوی سفید غربی (1931,Penaeus vannamei Boone) در سیستم های آبزی پروری معمولی و توده ساز زیستی
در مطالعه حاضر عملکرد اقتصادی و تولید میگوی سفید غربی در سیستم های آبزی پروری سنتی و توده ساز زیستی مورد ارزیابی قرار گرفت. میگوی سفید غربی در مرحله جوانی با وزن 0/33± 2/56 گرم (میانگین ± انحراف از معیار) به مدت 5 هفته در ظروف فایبرگلاس با حجم آبگیری 180 لیتر و با تراکم یک گرم بیومس در لیتر در چهار تیمار شامل یک تیمار تعویض آب (100% غذادهی کنسانتره) و سه تیمار توده ساز به ترتیب با 100، 66/6 و 33/3% غذای کنسانتره (بدون تعویض آب) تغذیه شدند. براساس نتایج به دست آمده، تفاوت معنی داری در مقادیر پارامترهای شاخص های کیفی آب (0/05>P) و هم چنین بین عملکرد تولید و اقتصادی میگوی سفید غربی در دو سیستم وجود داشت (0/05>P). بیش ترین میزان افزایش وزن بدن، سرعت رشد (0/136 گرم در روز)، ضریب رشد ویژه (3 درصد در روز)، ضریب بقاء (90/48 درصد) و بازده غذایی در تیمارهای توده ساز به دست آمد (0/05>P). بیش ترین سودآوری در سیستم های توده ساز مشاهده شدکه با سیستم معمولی اختلاف معنی داری نشان داد (0/05>P). نتایج تحقیق بیانگر این است که با سیستم توده ساز زیستی می توان عملکرد تولید میگوی سفید غربی را در مرحله جوانی افزایش داد و حضور توده های زیستی سبب بهبود عملکرد اقتصادی میگوی سفید غربی در سیستم بدون تعویض آب می شود.
http://www.aejournal.ir/article_107448_0775043c0ee4845090060c326b8d709c.pdf
2020-06-21
347
354
10.22034/aej.2020.107448
آبزی پروری
سیستم توده ساز زیستی
میگوی سفید غربی
محمدحسین
خانجانی
m.h.khanjani@ujiroft.ac.ir
1
گروه علوم و مهندسی شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه جیرفت، جیرفت، ایران
LEAD_AUTHOR
میر مسعود
سجادی
mmsajjadi@hotmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
مرتضی
علیزاده
r.mahmodi@areeo.ac.ir
3
مرکز تحقیقات ملی آبزیان آب های شور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بافق، ایران
AUTHOR
ایمان
سوری نژاد
i_sourinezhad@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی و جوی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
Avnimelech, Y., 2009. Biofloc Technology: A Practical Guide Book. The World Aquaculture Society, Baton Rouge, Louisiana, USA. 182 p.
1
Avnimelech, Y., 2012. Biofloc Technology: A Practical Guide Book, 2nd Edition. The World AquacultureSociety, Baton Rouge, Louisiana, United States. 272 p.
2
Azim, M.E. and Little, D.C., 2008. The biofloc technology (BFT) in indoor tanks: water quality, Biofloc composition, and growth and welfare of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture. Vol. 283, pp: 29-35.
3
Browdy, C.L.; Bratvold, D.; Stokes, A.D. and Mcintosh, R.P., 2001. Perspectives on the application of closed shrimp culture systems. In: The New Wave, Proceedings of the Special Session on Sustainable Shrimp Culture (ed. by E.D. Jory and C.L. Browdy), The World Aquaculture Society, Baton Rouge, LA, USA. pp: 20-34.
4
Burford, M.A.; Thompson, P.J.; McIntosh, R.P.; Bauman, R.H. and Pearson, D.C., 2004. The contribution of flocculated material to shrimp (Penaeus vannamei) nutrition in a high intensity, zero-exchange system. Aquaculture. Vol. 232, pp: 525-537.
5
Chu, C.P. and Lee D.J., 2004. Multiscale structures of biological flocs. Chemical Engineering Science. Vol. 59, pp: 1875-1883.
6
Crab, R.; Defoirdt, T.; Bossier, P. and Verstraete, W., 2012. Biofloc technology in aquaculture: Beneficial effects and future challenges. Aquaculture. Vol. 356-357, pp: 351-356.
7
Cuzon, G.; Addison, L.; Gaxiola, G.; Rosas, C. and Guillaume, J., 2004. Nutrition of Penaeus vannamie reared in tank or in ponds. Aquaculture. Vol. 235, pp: 513-551.
8
De Schryver, P. and Verstraete, W., 2009. Nitrogen removal from aquaculture pond water by heterotrophic nitrogen assimilation in lab-scale sequencing batch reactors. Bioresource Technology.Vol. 100, pp:1162-1167.
9
Emerenciano, M.; Ballester, E.L.C.; Cavalli, R.O. and Wasielesky, W., 2012. Biofloc technology application as a food source in a limited water exchange nursery system for Pink shrimp Farfantepenaeus brasiliensis (Latreille, 1817). Aquaculture Research. Vol. 43, pp: 447-457.
10
Emerenciano, M.; Cuzon, G.; Goguenheim, G.J. and Gaxiola, G., 2013. Floc contribution on spawning performance of blue shrimp Penaeus stylirostris. Aquaculture Research. Vol. 44, pp: 75-85.
11
Erondu, E.; Bekibele, D. and Gbulubo, A., 2006. Optimum crude protein requirement of Cat fish, Chrysichthys nigrodigitatus. Journal of Fisheries International. Vol. 1, pp: 40-43.
12
Gao, L.; Shan, H.W.; Zhang, T.W.; Bao, W.Z. and Ma, S.J., 2012. Effects of carbohydrate addition on Penaeus vannamei intensive culture in a zero-water exchange system. Aquaculture. Vol. 342, pp: 89-96.
13
Gaona, C.A.; Poersch, P.L.; Krummenauer, H.D.; Foes, G.K. and Wasielesky, W.Jr., 2011. The effect of solids removal on water quality, growth and survival of Penaeus vannamei in a biofloc technology culture system. International Journal of Recirculating Aquaculture. Vol. 12, pp: 54-73.
14
Hanson, T.R.; Posadas, B.; Samocha, T.M.; Stokes, A.D.; Losordo, T. and Browdy, C.L., 2009. Economic factors critical to the profitability of super-intensive biofloc recirculating production systems for marine shrimp Penaeus vannamei. In The Rising Tide, Proceedings of the Special Session on Sustainable Shrimp Farming (Browdy, C.L. and Jory, D.E.,). pp: 268-83. World Aquaculture Society, Baton Rouge.
15
Islam, M.S., 2008. From Pond to Plate: Towards a Twin Driven Commodity Chain in Bangladesh Shrimp Aquaculture. Food Policy. Vol. 33, pp: 209-223.
16
Khanjani, M.H.; Sajjadi, M.M.; Alizadeh, M. and Sourinejad, I., 2017. Nursery performance of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei Boone, 1931) cultivated in a biofloc system: the effect of adding different carbon sources. Aquaculture Research. Vol. 48, pp: 1491-1501.
17
Khanjani, M.H.; Sajjadi, M.M.; Alizadeh, M. and Sourinejad, I., 2015. Effect of different feeding levels on water quality, growth performance and survival of Western white shrimp (Litopenaeus vannamei) post larvae with application of biofloc technology. Iranian Scientific Fisheries Journal. Vol. 24, pp: 13-28. (In Persian).
18
Khanjani, M.H.; Sajjadi, M.M.; Alizadeh, M. and Sourinejad, I., 2016. Study on nursery growth performance of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei Boone, 1931) under different feeding levels in zero water exchange system. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 15, pp: 1465-1484.
19
Khanjani, M.H.; Sajjadi, M.M.; Alizadeh, M. and Sourinejad, I., 2016. Production and evaluation of biofloc for use in zero- water exchange rearing system, Journal of Aquaculture Development. Vol. 10, pp: 33-40. (In Persian).
20
Krummenauer, D.; Samocha, T.; Poersch, L.; Lara, G. and Wasielesky, W.Jr., 2014. The reuse of water on the culture of pacific white shrimp, Penaeus vannamei, in BFT system. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 45, pp: 3-14.
21
Kuhn, D.D.; Boardman, G.D.; Craig, S. R.; Flick, G.J. and McLean, E., 2008. Use of microbial flocs generated from tilapia effluent as a nutritional supplement for shrimp Penaeus vannamei in recirculating aquaculture systems. J of the World Aquaculture Society. Vol. 39, pp: 72-82.
22
Maicá, P.F.; de Borba, M.R.; Martins, T.G. and Junior, W.W., 2014. Effect of salinity on performance and body composition of pacific white shrimp juveniles reared in a super-intensive system. Revista Brasileira de Zootecnia. Vol. 43, pp: 343-350.
23
McAbee, B.J.; Bruce, J.W.; Weirich, C.R.; Stokes, A.D. and Browdy, C.L., 2003. Use of super-intensive greenhouse-enclosed raceway systems for the production of juvenile Penaeus vannamei. p. 169. In: Abstracts of Aquaculture America 2003. World Aquaculture Society, Baton Rouge, Louisiana, USA.
24
Megahed, M.E., 2010.The effect of microbial Biofloc on water quality, survival and growth of the Green tiger shrimp (Penaeus Semisulcatus) fed with different crude protein levels. Journal of the Arabian Aquaculture Society. Vol.5, pp: 119-141.
25
MOOPAM. 1999. Manual of oceanographic observations and pollutants analysis methods (Third Edition). The Regional Organization for the Protection of the Marine Environment (ROPME), Kuwait.
26
Moss, S.M. and Leung, P.S., 2006. Comparative cost of shrimp production: earthen ponds versus recirculating aquaculture systems. In Shrimp Culture: Economics, Marketing and Trade(Ed. by Leung, P.S. and Engle, C.R.,). pp: 291-300. Blackwell Publishing, Ames.
27
Neiland, A.E.; Soley, N.; Varley, J.B. and Whitmarsh, D.J., 2001. Shrimp Aquaculture: Economic Perspectives for Policy Development. Marine Policy. Vol. 25, pp: 265-279.
28
Ray, J.A.; Lewis, B.L.; Browdy, C.L. and Loffler, J.W., 2010. Suspended solids removal to improve shrimp (Penaeus vannamei) production and an evaluation of a plant-based feed in minimal-exchange, super intensive culture systems. Aquaculture. Vol. 299, pp: 89-98.
29
Sa, D.T.; Sousa, R.R.De.; Rocha, I.R.C.B.; Lima, G.C.De. and Costa, F.H.F., 2013. Brackish shrimp farming in northeastern Brazil: the environmental and socio-economic impacts and sustainability, Natural Resources. Vol. 4, pp: 538-550.
30
Tacon, A.G.J.; Cody, J.J.; Conquest, L.D.; Divakaran, S.; Forster, I.P. and Decamp, O.E., 2002. Effect of culture system on the nutrition and growth performance of Pacific white shrimp Penaeus vannamei (Boone) fed different diets. Aquaculture Nutrition. Vol. 8, pp: 121-139.
31
Wasielesky, W.; Atwood, H.; Stokes, A.; Browdy, C.L., 2006. Effect of natural production in a zero exchange suspended microbial floc based super-intensive culture system for white shrimp Penaeus vannamei. Aquaculture. Vol. 258, pp: 396-403.
32
Xu, W.J. and Pan, L.Q., 2012. Effects of bioflocs on growth performance, digestive enzyme activity and body composition of juvenile Penaeus vannamei in zero-water exchange tanks manipulating C/N ratio in feed. Aquaculture. Vol. 356, pp: 147-152.
33
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر سطوح مختلف قلیائیت آب بر شاخص های رشد و تولیدمثل آرتمیا فرانسیسکانا (Artemia franciscana) در سیستم کشت بیوفلاک
تاثیر سطوح مختلف قلیائیت آب بر شاخص های رشد و تولیدمثل آرتمیا فرانسیسکانا (Artemia franciscana) در سیستم کشت بیوفلاک (biofloc) بررسی شد. ابتدا سطوح مختلف قلیائیت آب (75، 150، 225 و 300 میلی گرم بر لیتر کربنات کلسیم) در محیط پرورشی مبتنی بر بیوفلاک تامین و سپس بهترین سطح قلیائیت (میزان مواد مغذی و حجم تولید بیوفلاک) روی میزان رشد و تولیدمثل آرتمیا در دو تیمار گروه شاهد (آرتمیای پرورش یافته با آب سبز حاوی Dunaliella salina) و گروه تغذیه شده با بیوفلاک مقایسه شد. حجم تولید بیوفلاک در قلیائیت 150 میلی گرم بر لیتر به طور معنی داری بیش تر از سایر تیمارها بود (0/05>p). میزان پروتئین توده بیوفلاکی در قلیائیت 150 میلی گرم بر لیتر بالاتر و به طور معنی داری بیش تر از 75 میلی گرم بر لیتر بود (0/05>p). میزان آمونیاک کل، نیتریت، نیترات، BOD و TSS در تیمار حاوی بیوفلاک مقادیر بالاتری را نسبت به تیمار جلبکی نشان داد. با افزایش میزان قلیائیت، پارامترهای سختی کل، نیتروژن کل، نیتریت و نیترات به طور معنی داری در تیمار بیوفلاکی افزایش یافتند (0/05>p). نسبت اسیدهای چرب امگا 3 به امگا 6 و نسبت ایکوزاپنتانوییک به دیکوزاهگزانوییک اسید در تیمار جلبکی به طور معنی داری بالاتر از تیمار بیوفلاکی بود (0/05>p). بر این اساس، قلیائیت 150 میلی گرم بر لیتر به عنوان بهترین سطح قلیائیت جهت تولید بیوفلاک پیشنهاد گردید. مقایسه میزان رشد و شاخص های تولیدمثلی آرتمیا در انتهای دوره پرورش در آرتمیاهای تغذیه شده با گروه شاهد و بیوفلاک نشان داد که علی رغم عدم وجود اختلافات معنی دار، آرتمیاهای تغذیه شده با جلبک، از رشد و شاخص های تولیدمثلی نسبتاً بهتری از نظر تعداد کل موالید و دفعات تخم ریزی برخوردار بودند، (طول کل: 9/52، دفعات تخم ریزی: 4 و تعداد کل موالید 182/8 در تیمار جلبک در مقابل طول کل 9/42، دفعات تخم ریزی: 3/6 و تعداد کل موالید: 130/6 در تیمار بیوفلاک) درحالی که میزان بازماندگی، مدت زمان لازم برای رسیدگی جنسی و نسبت تولید سیست به ناپلیوس در گروه تغذیه شده با بیوفلاک بالاتر بود (بازماندگی 80/2، مدت زمان رسیدگی جنسی (روز): 18/8 و نسبت تولید سیست به ناپلی: 66/6 در تیمار بیوفلاک در مقابل بازماندگی: 78/4، مدت زمان رسیدگی جنسی (روز): 18/2 و نسبت تولید سیست به ناپلی در تیمار جلبک 56/4). براساس نتایج، تغذیه آرتمیا با غذای بیوفلاکی به جای جلبک در مقیاس کوچک تر برای رشد و تولید انبوه آرتمیا امکان پذیر می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_107473_b9d3617b8faa28ad0b58949c2fed4ad5.pdf
2020-06-21
355
362
10.22034/aej.2020.107473
آرتمیا فرانسیسکانا
بیوفلاک
شاخص های رشد
تولیدمثل
مجید
ناصری زاده
majid.naserizadeh@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران
AUTHOR
ابوالقاسم
اسماعیلی فریدونی
a.esmaeili@sanru.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران
LEAD_AUTHOR
ناصر
آق
agh1960@gmail.com
3
پژوهشکده آرتمیا و آبزی پروری، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
AUTHOR
محمد
هرسیج
m_harsij80@gonbad.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده علوم کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
Abu Bakar, N.S.; Mohd Nasir, N.; Lananan, F.; Abdul Hamid, S.H.; Lam, S.S. and Jusoh, A., 2015. Optimization of C/N ratios for nutrient removal in aquaculture system culturing African catfish (Clarias gariepinus) utilizing bioflocs technology. International Biodeterioration and Biodegradation. Vol. 20, pp: 1-7.
1
APHA. 1998. Standard Methods for the Examination of the Water and Wastewater, 22nd edn. American Public Health Association, Washington, DC. USA. 874 p.
2
Avnimelech, Y. and Kochba, M., 2009. Evaluation of nitrogen uptake and excretion by tilapia in biofloc tanks using N-15 tracing. Aquaculture. Vol. 287, No. 1, pp: 163-168.
3
Avnimelech, Y., 2014. Biofloc Technology- A Practical Guidebook. 3rd Edition. World Aquaculture Society. 258 p.
4
Azim, M.E. and Little, D.C., 2008. The biofloc technology (BFT) in indoor tanks: Water quality, biofloc composition, and growth and welfare of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture. Vol. 283, pp: 29-35.
5
Coutteau, P.; Brendonck, L.; Lavens, P. and Sorgeloos, P., 1992. The use of manipulated baker’s yeast as an algal substitute for the laboratory culture of Anostraca. Hydrobiologia. Vol. 234, pp: 25-32.
6
Crab, R.; Defoirdt, T.; Bossier, P. and Verstraete, W.,2012. Biofloc technology in aquaculture: beneficial effects and future challenges. Aquaculture.Vol. 417, pp: 351-356.
7
Cutts, C.J.; Sawanboonchun, J.; Mazorra de Quero, C. and Bell, J.G., 2006. Diet induced differences in the essential fatty acid (EFA) compositions of larval Atlantic cod (Gadus morhua L.) with reference to possible effects of dietary EFAs on larval performance. ICES Journal of Marine Science. Vol. 6, pp: 302-310.
8
Dhont, J. and Lavens, P., 1996. Tank production and use of on-grown Artemia. In Manual on the Production and Use of Live Food for Aquaculture. Edited by Lavens, P. and Sorgeloos, P., Vol. 361, FAO Fisheries Technical Paper. Rome, Italy. pp: 164-194.
9
Dhont, J. and Van Stappen, G., 2003. Biology, tank production and nutritional value of Artemia franciscana. Artemia. In Live Feeds in Marine Aquaculture. Edited by Stottrup, J.G. and McEvoy, L.A., 1rd Ed. Blackwell Science Ltd. pp: 65-121.
10
Emerenclano, M.; Gaxiola, G. and Cuzon, G., 2013. Biofloc technology (BFT): a review for aquaculture application and animal food industry. Disponível em: http://dx.doi.org/10.5772/53902.
11
Furtado, P.S.; Poersch L.H. and Wasielesky, Jr.W., 2011. Effect of calcium hydroxide, carbonate and sodium bicarbonate on water quality and zootechnical performance of shrimp Litopenaeus vannamei reared in biofloc technology systems. Aquaculture. Vol. 32, pp: 130-135.
12
Furtado, P.S.; Poersch L.H. and Wasielesky, Jr.W., 2015. The effect of different alkalinity levels on (Litopenaeus vannamei) reared with biofloc technology. Aquaculture International. Vol. 23, pp: 345-358.
13
Hache, R. and Plante, S., 2011. The relationship between enrichment, fatty acid profiles and bacterial load in cultured rotifers (Brachionus plicatilis L-strain) and Artemia (Artemia salina strain franciscana). Aquaculture. Vol. 311, pp: 301-308.
14
Hussain, A.; Mohammad, D.; Ali, E. and Sallam, W., 2015. Growth performance of the green tiger shrimp Penaeus semisulcatus raised in biofloc systems. Aquaculture and Marine Biology. Vol. 2, No. 5, pp: 10-20.
15
Jiao, W.; Guan-nan, M.; Yuan-Gao, D. and Li-Ying, S., 2015. Effect of glucose and salinity on Artemia growth, biofloc formation, and microbial diversity in culture. Oceanologia et Limnologia Sinica. Vol. 2, pp: 30-38.
16
Lavens, P. and Sorgeloos, P., 1996. Manual on the Production and Use of Live Food for Aquaculture. FAO Technical Paper. 305 p.
17
Martínez-Córdova, L.R.; Martínez-Porchas, M.; Porchas Cornejo, M.A.; Gollas-Galván, T.;Scheuren-Acevedo, S.; Arvayo, M.A. and López-Torres, M.A., 2016. Bacterial diversity studied by next-generation sequencing in a mature phototrophic Navicula sp. based biofilm promoted into a shrimp culture system. Aquaculture Research. Vol. 12, pp: 28-41.
18
Ronald, L.; Van Stappen, G.; Van Hoa, N. and Sorgeloos, P., 2014. Effect of carbon/nitrogen ratio manipulation in feed supplements on Artemia production and water quality in solar salt ponds in the Mekong Delta, Vietnam. Aquaculture Research. Vol. 45, pp: 1906-1912.
19
Schveitzer, R.; Arantes, R.; Costodio, P.; Santo, C.; Arana, L.; Seiffert, W. and Andreatta, E.R., 2013. Effect of different biofloc levels on microbial activity, water quality and performance of Litopenaeus vannamei in a tank system operated with no water exchange. Aquaculture Engineering. Vol.56, pp: 59-70.
20
Sorgeloos, P.; Lavens, P.; Léger, P.; Tackaert, W. and Versichele, D., 1986. Manual for the Culture and Use of Brine Shrimp Artemia in Aquaculture. Artemia Reference Center, State University of Ghent, Belgium. pp: 1-319.
21
Stirling, H.P., 1985. Chemical and biological methods of water analysis for Aquaculturists. Stirling Press, Scotland. 320 p.
22
Sui, L.Y.; Wang, J.; Nguyen, V.H.; Sorgeloos, P. and Bossier,P.,2013. Increased carbon & nitrogen supplementation in Artemia culture ponds results in higher cyst yields. Aquaculture International. Vol. 21, pp: 1343-1354.
23
Teresita, D.N.; Maldonado-Montiel, J. and Leticia, G., 2005. Biomass production and nutritional value of Artemia spp. (Anostraca: Artemiidae) in Campeche. Revista de Biología Tropical. Vol. 53, pp: 447-454.
24
Wei, Y.; Liao, S. and Wang, A., 2016. The effect of different carbon sources on the nutritional composition, microbial community and structure of bioflocs. Aquaculture. Vol. 1, pp: 88-93.
25
Zmora, O.; Avital, E. and Gordin, H., 2002. Results of an attempt for mass production of Artemia in extensive ponds. Aquaculture. Vol. 213, pp: 395-400.
26
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی پراکنش و تراکم فصلی زئوپلانکتون ها در سواحل شمالی دریای مکران
هدف از این پژوهش بررسی جمعیت زئوپلانکتونی سواحل شرقی چابهار و شمالی دریای مکران در طی سال های 96-1395 بوده است. نمونه برداری با استفاده از تور مخروطی زئوپلانکتون با چشمه 100 میکرون و با دهانه 30 سانتی متر به صورت کشش افقی، در 8 ایستگاه در مناطق خلیج چابهار، بریس و رمین طی چهار فصل از تابستان 1395 تا بهار 1396 انجام گرفت. فاکتورهای فیزیکی و شیمیایی آب شامل دما، شوری، pH و شفافیت در زمان نمونه برداری در هر ایستگاه اندازه گیری گردید. طبق آزمون واریانس یک طرفه، اختلاف معنی داری بین فصول مختلف نمونه برداری از لحاظ میزان شفافیت، مشاهده نشد (0/05<p). در مورد فاکتورهای دما، شوری و pH بین فصول مختلف نمونه برداری اختلاف معنی داری مشاهده شد (0/05>p). در این پژوهش 10 رده از جوامع زئوپلانکتونی شناسایی شدند. رده Copepoda 66/87 درصد و سپس Bivalvia و Thaliacea با 13/53 درصد بیش ترین حضور و رده (لارو) Polychaeta، Cephalochordata، Ostracoda کم ترین حضور (در مجموع با 2/22 درصد) را در فصول مختلف نمونه برداری داشته اند. حداقل تراکم زئوپلانکتون در فصل زمستان با میانگین 41/62±876/52 فرد بر مترمکعب و حداکثر تراکم در فصل پاییز، با میانگین 41/16±1339/98 فرد بر مترمکعب محاسبه شد. هم چنین همبستگی مثبت و معنی داری بین تراکم با دما، با توجه به ضریب همبستگی 0/628 (0/000=p) و تراکم-شوری، با ضریب همبستگی 0/391 (0/027=p)، مشاهده شد (0/05>p). با توجه به نتایج، به نظر می رسد ساختار اجتماعات زئوپلانکتونی این منطقه تحت تأثیر تغییرات ناشی از بادهای مانسون و جریان های فراچاهنده ساحلی می باشد. چرخه تولید و نوسانات فصلی زئوپلانکتون بستگی به پاسخی دارد که محیط به این تغییرات می دهد. درنتیجه، هنگامی که زئوپلانکتون ها در معرض اختلالات شدید (مانسون) قرار دارند، چند گونه به گونه غالب تبدیل می شوند و یکنواختی گونه ای کاهش یابند.
http://www.aejournal.ir/article_105826_e663924963a864dfca556d54815b0328.pdf
2020-06-21
363
372
10.22034/aej.2020.105826
زئوپلانکتون
خلیج چابهار
تراکم
دریای مکران
مهران
لقمانی
loghmani_mehran@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، ایران
LEAD_AUTHOR
گیلان
عطاران فریمان
attaragilan@gmail.com
2
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، ایران
AUTHOR
فاطمه
ذبیحی
zabihi@gmail.com
3
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، ایران
AUTHOR
ابراهیمی،م.، 1383. بررسی هیدرولوژی و هیدروبیولوژی خلیج فارس (آب های محدوده استان هرمزگان). موسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان. 52 صفحه.
1
اسکندری، و.، 1383.تنوع و تراکم گروه های زئوپلانکتونی در آب های دور از ساحل هرمزگان. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه تربیت مدرس. 156 صفحه.
2
اعتمادی دیلمی، ا.؛ سواری، ا.؛ ولی نسب، ت. و سخایی، ن.، 1391. شناسایی گونه ای و بررسی تأثیر پدیده مانسون بر خرچنگ های خانواده Decapoda: Brachyura) cypodidae) در مناطق جزر و مدی دریای عمان، استان هرمزگان. مجله علوم و فنون دریایی. دوره 11، شماره 1، صفحات 18 تا 32.
3
باقری، س.؛ سبک آرا، ج.؛ یوسف زاد، ا. و زحمتکش، ی.، 1395. مطالعه اکولوژیک جوامع زئوپلانکتون دریاچه شهدای خلیج فارس (چیتگر تهران) و اولین گزارش از ژله ماهی آب شیرین (Craspedacusta sp) در ایران. مجله علمی شیلات ایران. سال 25، شماره 5، صفحات 113 تا 128.
4
پروین نیا،م.، 1387. آلودگی آب های ساحلی، آبزیان و رسوبات ناشی از فعالیت فازهای مختلف منطقه ویژه اقتصادی انرژی پارس. دومین همایش و نمایشگاه تخصصی، مهندسی محیطزیست، 6 صفحه.
5
پولادی، م.؛ فرهادیان، ا. و وزیری زاده، ا.، 1392. ترکیب، فراوانی و زی تودة جامعة زئوپلانکتونی در مصب رودخانة حله، استان بوشهر، خلیج فارس. نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 66، شماره 3، صفحات 255 تا 270.
6
تجویدی، ن.؛ منوچهری، ح. و شاپوری، م.، 1394. شناسایی جوامع زئوپلانکتون بندر عسلویه و جزیره قشم. مجله زیست شناسی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 7، شماره 26، صفحات 57 تا 67.
7
دهانی، ا.، 1394. بررسی ساختار جوامع ماکروبنتوز در سواحل گلی منطقه زیر جزر و مدی خلیج چابهار. پایان نامه کارشناسی ارشد زیست شناسی دریا. دانشگاه علوم دریایی چابهار. صفحات 90 صفحه.
8
رضایی، ا.؛ کاظمیان، م.؛ عوفی، ف. و شاپوری، م.، 1389. بررسی تنوع زئوپلانکتون منتقل شده توسط آب توازن در بندرتجاری شهید رجایی. مجله بیولوژی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 2، شماره 5، صفحات 67 تا 70.
9
سنجرانی، م.، 1393. شناسایی و بررسی فراوانی راسته Calanoida از زیر رده پاروپایان در آب های ایرانی دریای عمان قبل و بعد از مانسون. مجله پژوهش های جانوری (مجله زیست شناسی ایران). جلد 27، شماره 21، صفحات 59 تا 70.
10
شاپوری، م.، 1391. بررسی ترکیب و فراوانی زئوپلانکتون آب های خلیج فارس محدوده خلیج نایبند و جزیره قشم. دانشگاه آزاد اسلامی، واحد سوادکوه، باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، سوادکوه، ایران. صفحات 59 تا 68.
11
فاضلی، ن.؛ رضایی، ح.؛ سوای، ا.؛ زارع، ر. و شهرکی، م.، 1387. بررسی اثر پارامترهای محیطی بر پاروپایان مهم اقتصادی خلیج چابهار. مجله اقیانوس شناسی. سال 6، شماره 21، صفحات 81 تا 87.
12
فرهادیان، ا. و پولادی، م.، 1391. ساختار جامعه زئوپلانکتونی مصب رودخانه حله در استان بوشهر، ایران. پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات. دانشگاه صنعتی اصفهان. 15 صفحه.
13
فلاحی کپورچالی، م.؛ دهقان، س. و اسلامی، ف.، 1382. گزارش پلانکتونی حوزه ایرانی خلیج فارس. پروژه هیدرولوژی و بیولوژی خلیج فارس، موسسه تحقیقات شیلات ایران.
14
لقمانی، م.؛ ذبیحی، ف. و عطاران فریمان، گ.، 1398. بررسی تاثیر مانسون بر تنوع زیستی زئوپلانکتون های سواحل شرقی چابهار (دریای مکران). فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 11، شماره 3، صفحات 327 تا 334.
15
میردار،ج.، 1381 .شناسایی، تعیین تراکم و تنوع ماکروبنتوزها در خورهای شمالی استان بوشهر. پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات، دانشگاه تهران. 202 صفحه.
16
Acuna J.L. and Anadon, R., 1992. O. dioica assemblages in a shelf area and their relationship with temperature. J Plankton Res. Vol.14, pp: 1233-1250.
17
APHA. 1999. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater. American Public Health Association, Washington DC.
18
Alkhabaz, M. and Fahmi, A.M., 1998.Off shore Environment of the ROPME Sea Area after the war related oil spill. Terra Scientific Publishing company (TERRAPUB), Tokyo. pp: 303-318.
19
Al-yamani, F.; Al-Rifaie, K.; Al-Mutairi, H. and Ismail, W., 1998. Post spill spatial distribution of zooplankton in ROPME Sea Area.Offshore Environment of the ROPME Sea Area after the war-related oil spill. Eds. Otsuki. A., Abdulraheem M., Reynolds, M. ISBN No 4-88701-123-3.
20
Baker, M.; Hosny, C.F.H. and Al-Suwailem, A.M., 2006. Contribution to the study of zooplankton diversity, abundance and biomass in Saudi waters, Arabian Gulf, Sultan Qaboos. Agricultural and Marine Sciences, Vol. 11, pp: 71-88.
21
Bellinger, E.G. and Sigee, D.C., 2010. Freshwater Algae Identification and Use as Bioindicators. Blackwell, John Wiley & Sons, Ltd. 285 p.
22
Cailliet, G.M. and Simenstaad, C.A., 1982. Differential fish grazing and benthic community structure on Hawiian Reefs. univ. Wash, Sea grant. Pr., WSG-WO-82-2: 249-257.
23
Chihara, M. and Murano, M., 1997. An illustrated guide to marine plankton in Japan. Tokai University Press, Japan. 1574 p.
24
Gopakumar, G. and Santhosi, I., 2009. Use of copepods as live feed for larviculture of damselfishes. Asian Fisheries Science. Vol. 22, pp: 1-6.
25
Goswami, C.S., 1982. Distribution and Diversity of copepods in the Mandovi-Zuari estuarine system, Goa. Indian Journal of Marine Science. Vol. 11, pp: 292-295.
26
Goswami, C.S., 1983. Production and zooplankton community structure in the lagoon & surrounding sea at Kavaratti Atoll (Lakshadweep). Indian journal of marine science. Vol. 12, pp: 31-35.
27
Jayasinghe, R.P.P.K.; Yusoff, F.M. and Arshad, A., 2003. Zooplankton population in tropical estuaries: a review. In: Japar Sidik, B., Arshad, A. (Eds.), Aquatic Resource and Environmental Studies of the Straits of Malacca: Managing the Straits through Science and Technology. pp: 133-143.
28
Fazli, H., 2011. Some environmental factors effects on species composition, catch and CPUE of Kilkas in the Caspian Sea. International Journal of Natural Resources and Marine Sciences. Vol. 1, pp: 75-82.
29
Kang, J.H.; Hyun, B.G. and Shin, K., 2010. Phytoplankton viability in ballast water from international commercial ships berthed at ports in Korea. Marine pollution bulletin. Vol. 60, pp: 230-237.
30
Lansac-Toha, F.A.; Thomaz, S.M.; Lima, A.F.; Roberto, M.D.C.; Garcia, A.P.P.; Siapatis, A.; Giannoulaki, M.; Valavanis, V.D.; Palialexis, A.; Schismenou, E.; Machias, A. and Somarakis, S., 2008. Modelling potential habitat of the invasive ctenophore Mnemiopsis leidyi in Aegean Sea.Hydrobiologia. Vol. 612, pp: 281-295.
31
Lopes, R.M., 1994., Zooplankton distribution in the Guarau River estuary (South-Eastern Brazil). Estuarine, coastal and shelf science. Vol. 39, pp: 287-302.
32
Maguire, G.B.; Gibbs, P.J. and Collett, L.C., 1985. The macrobenthic fauna of brackish water prawn farming ponds at Port Stephens New South Wales. Australian Journal of Zoology. Vol. 21, pp: 445-458.
33
McLaren, I.A., 1963. Effects of temperature on growth of zooplankton and the adaptive value of vertical migration. Fishery Research. Vol. 20, pp: 685-727.
34
Michel, H.B.; Behbehani, M.; Herring, D.; Arar, M.; Soushani, M. and Brakoniecki, T., 1983. Zooplankton diversity distribution and abundance in Kuwait waters. Final report. Kuwait Institute for Scientific Research.Vol. 8, pp: 37-105.
35
Mishra, S. and Panigrahy, R.C., 1999. Zooplankton ecology of the Bahuda estuary (Orissa), East coast of India. Indian Journal of Marine Science. Vol. 28, pp: 297-301.
36
Mohan, P.C.; Roman, A.V. and Sreenivas, N., 1999. Distribution of zooplankton in relation to water currents in Kakinada Bays East Coast of India. Indian Journal of Marine Science. Vol. 28, pp: 192-197.
37
Monchenko, V.I., 1974. Cyclopidae. Fauna Ukrainii. Vol. 27, pp: 1-452.
38
Nishida, S., 1983. Redescription of Oithona brevocornis Giesbrecht, and O. aruensis Fruchtl, new rank, with notes on the status of O. spinulosa Lindberg. Bulletine of Plankton Society of Japan. Vol. 30, pp: 71-80.
39
Osore, M.K.W., 1992. A note on the zooplankton distribution and diversity in a tropical mangrove creek system, Gazi, Kenya. Hydrobiologia. Vol. 247, pp: 119-120.
40
Osore, M.K.W.; Fiers, F. and Daro. M.H., 2004. Copepod composition, abundance and diversity in Makupa Creek, Mombasa, Kenya. Western Indian Ocean Journal of Marine biology. Mar. Sci. Vol. 1, pp:65-73.
41
Rajvaidya, N. and Markandey, D.K., 2005. Water: characteristics and properties. A.P.H. Publishing Corporation. 399 p.
42
ROPME. 2000. Reginal Report of the State of the Marin Environment. ROPME, Kuwait.
43
ROPME. 2003.Reginal Report of the State of the Marin Environment. ROPME, Kuwait.
44
ROPME. 2004. Regional Report of the State of the Marin Environment. ROPME, Kuwait.
45
Smith, S.L., 1995. Meso zooplankton response to seasonal climate in the tropical ocean. ICES Journal of Mar, Sci. Vol. 52, pp: 427-438.
46
Southwood, T.R.E. and Henderson, P.A., 2000. Ecological Methods, Third Edition.Blackwell Science. 575 p.
47
Todd, C.D. and Laverack, M.S., 1991. Coastal marine zooplankton: a practical manual for students. Cambridge University Press. 106 p.
48
Tomita, M.; Shiga, N. and Ikeda, T., 2003. Seasonal occurrence and vertical distribution of appendicularians in Toyama Bay, southern Japan Sea, Journal of Plankton Research, Oxford University Press. 25 p.
49
Zabella, J.D. and Gaudy, R., 1996. Seasonal variations in the zooplankton and in the population structure of Acartiatonsa in a very eutrophic area: La Habana Bay (Cuba). Journal of Plankton Research. Vol. 18, pp: 1123-1135.
50
ORIGINAL_ARTICLE
تنوع زیستی و ساختار اجتماعات درشت بی مهرگان کفزی ذخیرهگاه زیست کره حرّا (بندر خمیر و جزیره قشم)
این مطالعه با هدف بررسی ساختار اجتماعات درشت بی مهرگان کفزی، شاخصهای تنوع زیستی و شاخص سلامت آنها در بوم سامانه ذخیرهگاه زیست کره حرّا صورت گرفت. نمونه ها در زمستان سال 1396، از هشت ایستگاه نمونه برداری شامل چهار ایستگاه در بندر خمیر و چهار ایستگاه در طبل جمع آوری شدند. در هر منطقه نیمی از ایستگاه ها در زیستگاه دارای پوشش گیاهی حرا واجد نماتوفورها (Vegetated) و نیمی دیگر در ناحیه بستر گلی اطراف نهرهای حرّا (Creek bank) قرار داشتند. 27 آرایه مربوط به 19 خانواده در این تحقیق شناسایی شدند. نتایج نشان داد که گونه Opusia indica از ده پایان با میانگین فراوانی 41/35±103/27 (خطای استاندارد) در مترمربع در بندرخمیر و190/67±83/45 در مترمربع در طبل، بیش ترین فراوانی را در تحقیق حاضر داشت. تفاوت معنی داری در شاخص های تنوع زیستی شانونوینر درشت بی مهرگان کفزی بین مناطق بندرخمیر و طبل (0/53=P) و نیز بین زیستگاه دارای پوشش گیاهی و زیستگاه بستر گلی (0/68=P) مشاهده نگردید. هم چنین نتایج آزمون nMDS نشان داد که ساختار اجتماعات دو منطقه بندرخمیر و طبل تفاوت معنی داری با هم ندارند. ولی این ساختار در زیستگاه های دارای پوشش گیاهی و فاقد پوشش گیاهی با هم متفاوت هستند. هم چنین نتایج دو شاخص ABC و W نشان داد که بوم سامانه مورد مطالعه از نظر تنش های محیطی در وضعیت نسبتاً مناسبی قرار دارد. نتایج تحقیق حاضر در شناخت بهتر این بوم سامانه حساس ساحلی و اتخاذ تصمیم هایی در جهت حفظ سلامت و پایداری آن ها در مقابله با عوامل تنش زای انسانی و طبیعی کمک خواهد نمود.
http://www.aejournal.ir/article_107487_488f3c2f31d2c80b780b41312a19eec2.pdf
2020-06-21
373
380
10.22034/aej.2020.107487
درشت بی مهرگان کفزی
تنوع زیستی
مانگرو
ذخیرهگاه زیست کره حرّا
نسترن
دلفان
d_nastaran@modares.ac.ir
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
AUTHOR
مهدی
قدرتی شجاعی
shojaeimgh@gmail.com
2
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
LEAD_AUTHOR
رضا
ندرلو
naderloo@ut.ac.ir
3
گروه زیست شناسی، دانشکده زیست شناسی، پردیس علوم، دانشگاه تهران، ایران
AUTHOR
Alfaro, A.C., 2006. Benthic macro-invertebrate community composition within a mangrove/seagrass estuary in northern New Zealand. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 66, No. 1-2, pp: 97-110.
1
Al-Khayat, J.A. and Jones, D.A., 1999. A comparison of the macrofauna of natural and replanted mangroves in Qatar. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 49, pp: 55-63.
2
Alongi, D.M., 2002. Present state and future of the world's mangrove forests. Environmental Conservation. Vol. 29, No. 3, pp: 331-349.
3
Brey, T., 2012. A multi‐parameter artificial neural network model to estimate macrobenthic invertebrate productivity and production. Limnology and Oceanography: Methods. Vol. 10, No. 8, pp: 581-589.
4
Bui, T.H.H. and Lee, S.Y., 2014. Does ‘you are what you eat’ apply to mangrove grapsid crabs? PLoS One. Vol. 9, No. 2, e89074.
5
Clarke, K.R., 1990. Comparisons of dominance curves. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 138, No. 1-2, pp: 143-157.
6
Clarke, K.R., 1993. Non‐parametric multivariate analyses of changes in community structure. Australian Journal of Ecology. Vol. 18, No. 1, pp: 117-143.
7
Danehkar, A., 2001. Mangroves forests zonation in Gaz and Harra international wetlands. The Environment Scientific Quarterly Journal. Vol. 34, pp: 43-49.
8
Gray, J.S., 1979. Pollution-induced changes in populations. Philosophical Transactions of the Royal Society. Vol. 286, No. 1015, pp: 545-561.
9
Krauss, K.W.; Lovelock, C.E.; McKee, K.L.; López Hoffman, L.; Ewe, S.M. and Sousa, W.P., 2008. Environmental drivers in mangrove establishment and early development: a review. Aquatic Botany. Vol. 89, No. 2, pp: 105-127.
10
Macintosh, D.J., 1980. Ecology and productivity of Malaysian mangrove crab populations (Decapoda: Brachyura). In Asian Symposium on Mangrove Environment: Research and Management, Kuala Lumpur (Malaysia). Vol.25-29.
11
Manson, F.J.; Loneragan, N.R.; Skilleter, G.A. and Phinn, S.R., 2005. An evaluation of the evidence for linkages between mangroves and fisheries: a synthesis of the literature and identification of research directions. In Oceanography and Marine Biology, CRC Press. Vol. 493-524.
12
Marín-Guirao, L.; Cesar, A.; Marin, A.; Lloret, J. and Vita, R., 2005. Establishing the ecological quality status of soft-bottom mining-impacted coastal water bodies in the scope of the Water Framework Directive. Marine Pollution Bulletin. Vol. 50, No. 4, pp: 374-387.
13
McLachlan, A.; Jaramillo, E.; Defeo, O.; Dugan, J.; de Ruyck, A. and Coetzee, P., 1995. Adaptations of bivalves to different beach types. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 187, No. 2, pp: 147-160.
14
Nordhaus, I.; Wolff, M. and Diele, K., 2006. Litter processing and population food intake of the mangrove crab Ucides cordatus in a high intertidal forest in northern Brazil. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 67, No. 1-2, pp: 239-250.
15
Peng, Y.; Chen, G.; Tian, G. and Yang, X., 2009. Niches of plant populations in mangrove reserve of Qi’ao Island, Pearl River Estuary. Acta Ecologica Sinica. Vol. 29, No. 6, pp: 357-361.
16
Rambouts, I.; Beaugrand, G.; Artigas, F.; Dauvin, J.-C.; Gevaert, F.; Goberville, E.; Kopp, D.; Lefebvre, S.; Luczak, C.; Spilmont, N.; Travers-Trolet, M.; Villanueva, M.C. and Kirby, R.K., 2013. Evaluating marine ecosystem health: case studies of indicators using direct observations and modelling methods. Ecological Indicators. Vol. 24, pp: 353-365.
17
Reynolds, R.M., 2002. Oceanography. The Gulf ecosystem: health and sustainability. Backhuys Publishers, Leiden, The Netherlands. Vol. 55-64.
18
Satumanatpan, S. and Keough, M.J., 2001. Roles of larval supply and behavior in determining settlement of barnacles in a temperate mangrove forest. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 260, No. 2, pp: 133-153.
19
Shahraki, M.; Saint-Paul, U.; Krumme, U. and Fry, B., 2016. Fish use of intertidal mangrove creeks at Qeshm Island, Iran. Marine Ecology Progress Series. Vol. 542, pp: 153-166.
20
Sheppard, C.; Al-Husiani, M.; Al-Jamali, F.; Al-Yamani, F.; Baldwin, R.; Bishop, J.; Benzoni, F.; Dutrieux, E.; Dulvy, N.K.; Durvasula, S.R.V. and Jones, D.A., 2010. The Gulf: a young sea in decline. Marine Pollution Bulletin. Vol. 60, No. 1, pp: 13-38.
21
Shojaei, M.G.; Gutow, L.; Dannheim, J.; Pehlke, H. and Brey, T., 2015. Functional diversity and traits assembly patterns of benthic macrofaunal communities in the southern North Sea. In Towards an Interdisciplinary Approach in Earth System Science, Springer, Cham. Vol. 183-795.
22
Slim, F.J.; Hemminga, M.A.; Ochieng, C.; Jannink, N.T.; De La Moriniere, E.C. and Van der Velde, G., 1997. Leaf litter removal by the snail Terebralia palustris (Linnaeus) and sesarmid crabs in an East African mangrove forest (Gazi Bay, Kenya). Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 215, No. 1, pp: 35-48.
23
Walters, B.B.; Rönnbäck, P.; Kovacs, J.M.; Crona, B.; Hussain, S.A.; Badola, R.; Primavera, J.H.; Barbier, E. and Dahdouh-Guebas, F., 2008. Ethnobiology, socio economics and management of mangrove forests: a review. Aquatic Botany. Vol. 89, No. 2, pp: 220-236.
24
Warwick, R., 1986. A new method for detecting pollution effects on marine macrobenthic communities. Marine Biology. Vol. 92, No. 4, pp: 557-562.
25
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین کیفیت آب رودخانه فوشه (استان گیلان) با استفاده از شاخص های زیستی ماکروبنتوز
کیفیت آب رودخانه فوشه (استان گیلان) با استفاده از ماکروبنتوزها و شاخص زیستی هیلسنهوف و شاخص تنوع شانون-وینر به منظور پایش محیط زیست بررسی شد. تعداد 4 ایستگاه انتخاب و نمونه برداری به صورت ماهیانه از اردیبهشت تا آذر 1396 انجام شد نمونه برداری از ماکروبنتوزها با استفاده از نمونه بردار سوربر با اندازه چشمه 300 میکرون و مساحت 900 سانتی مترمربع با 3 تکرار در هر ایستگاه صورت گرفت. نمونه های جمع آوری شده در اتانول 96 درصد تثبیت و برای شمارش و شناسایی به آزمایشگاه منتقل شدند. در مجموع تعداد 4928 نمونه ماکروبنتوز از 2 شاخه، 3 رده، 8 راسته، 25 خانواده و 31 جنس شناسایی شدند. لارو حشرات آبزی بیش ترین فراوانی را نشان دادند. فراوان ترین گروه ها به ترتیب از راسته (Diptera (53/09% خانواده Simuliidae، از راسته (Trichoptera (28/44% خانواده Hydropsychidae و از راسته (Ephemeroptera (16/24% خانواده Baetidae بودند. با استفاده از امتیازهای اختصاص داده شده هر خانواده براساس میزان مقاومت و یا حساسیت آن ها به آلودگی، شاخص زیستی هیلسنهوف (HFBI) محاسبه شد. نتایج به دست آمده از این شاخصآب رودخانه فوشه را در وضعیت کیفی خوب (دارای مقداری آلودگی آلی) قرار داد. شاخص زیستی BMWP/ASPT ایستگاه های 1 و 2 (بالادست) را در طبقه مشکوک به آلودگی و ایستگاه های 3 و4 (پایین دست) را در طبقه آلودگی متوسط نشان داد. شاخص تنوع شانون وینر برای ایستگاه های 1، 2 و 4 وضعیت نسبتاً آلوده و ایستگاه 3 وضعیت آلوده را نشان داد (P≤0/05).
http://www.aejournal.ir/article_107488_dbf5f3510cccf2f9011cb157922f8957.pdf
2020-06-21
381
388
10.22034/aej.2020.107488
شاخص تنوع
رودخانه فوشه
شاخص زیستی هیلسنهوف
ماکرو بنتوز
عاطفه
رضی رشت آبادی
atefehrazi@mailfa.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
جاوید
ایمانپور نمین
javidiman@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
LEAD_AUTHOR
مسعود
ستاری
msattari647@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
آخوندی، ل.؛ نظری، ع.؛ احمدی، ج. و نخعی، م.، 1390. پهنه بندی رودخانه قم رود بر اساس شاخص کیفی آب (NSFWQI) با استفاده از سامانه جغرافیایی GIS. چهارمین کنفرانس مدیریت منابع آب ایران. دانشگاه صنعتی امیر کبیر. صفحات 2 تا 4.
1
باقری، س. و عبدالملکی، ش.، 1381. بررسی پراکنش و تعیین ﺗﻮده زﻧﺪه بی ﻣﻬﺮﮔﺎن ﮐﻔﺰی درﯾﺎﭼﻪ ارس. ﻣﺠﻠﻪ علمی شیلات ایران. دوره 11، شماره 4، صفحات 1 تا 9.
2
جرجانی، س.؛ قلیچی، ا.؛ اکرمی، ر. و خیرآبادی، و.، 1387. ارزیابی شاخص زیستی آلودگی وفون کفزیان نهر مادرسو پارک ملی گلستان. مجله شیلات. سال 2، شماره 1، صفحات 41 تا 52.
3
شریفی نیا، م.؛ ایمانپورنمین، ج. و بزرگی ماکرانی، ا.، 1391. ارزیابی بوم شناختی رودخانه تجن با استفاده از گروه های تغذیه ای بزرگ بی مهرگان کفزی و شاخص های زیستی. مجله اکولوژی کاربردی دانشگاه صنعتی اصفهان. سال 1، شماره 1، صفحات 80 تا 95.
4
عبدلی، ا. و رحمانی، ح.، 1380. بررسی رژیم غذایی دو گونه گاو ماهی Neogobius fluviatilis و Nogobius melanostomus در نهر مادرسو پارک ملی گلستان، مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. سال 8، شماره 1، صفحات 3 تا 15.
5
قانع ساسان سرایی، ا.، 1383. شناسایی ساختار جمعیت ماکروبنتوزهای رودخانه چافرود در استان گیلان با توجه به برخی عوامل کیفی آب (در محدوده روستای اورمان ملال). پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات، دانشگاه تربیت مدرس. 98 صفحه.
6
کمالی، م. و اسماعیلی، ع.، 1388. ارزیابی زیستی رودخانه لاسم شهر آمل با استفاده از ساختار جمعیت بزرگ بی مهرگان کفزی. مجله علوم زیستی واحد لاهیجان. سال 3، شماره 1، صفحات 51 تا 61.
7
موسوی، م.س. ، 1389. بررسی اثرات پساب مزارع پرورش ماهی قزل آلا بر روی کیفیت آب رودخانه دوهزار تنکابن براساس مطالعات فون کفزیان رودخانه. پایاننامه کارشناسیارشد، دانشگاه علوم تحقیقات فناوری. صفحات 55 تا 68 .
8
نظامی، ش.ع. و خارا، ح.، 1384. ارزیابی اثرات خشکسالی بر ﺗﻨﻮع، ﺗﺮاﮐﻢ، ﻓﺮاواﻧﯽ و ﭘﺮاﮐﻨﺶ ﻣﻮﺟﻮدات ﮐﻔﺰی ﺗﺎﻻب اﻣﯿﺮﮐﻼﯾﻪ ﻻﻫﯿﺠﺎن. ﻣﺠﻠﻪ علمی شیلات ایران. شماره 3، دوره 4، صفحات 141 تا 156.
9
Aazami, J., 2015. Feasibility of Fish and Macroinvertebrate Indices in Ecological Integrity Assessment of Tajan River and Relation to Habitat Parameters. PhD thesis. Faculty of Natural Resources. Tarbiat Modares University. 80 p. (in Persian).
10
Allan, J., D. 1995. Stream Ecology. Structure and Function of Rumming waters. Chapman and Hill, New York.
11
Arimoro, F.O.; Ikomi, R.B. and Iwegbue, C., 2007. Water quality changes in relation to Diptera community patterns and diversity measured at an organic effluent impacted stream in the Niger Delta, Nigeria. Ecological Indicators. Vol. 7, pp: 541-552.
12
Barbour, M.T.; plafkin, J.L.; Bardley, B.P.; Graves, C.G. and Wisseman, R.W., 1998. Evaluation of EPT rapid bioassement metrics: Metric redundancy and variability among reference stream sites. Environ Toxic.Vol. 2, pp: 437-449.
13
Borja, A.; Franco, J. and Perez, V., 2000. A marine biotic index to establish the ecological quality of softbottom benthos within European estuarine & coastal environments. Marine Pollution Bulletin. Vol. 40, pp: 1100-1114.
14
Brundin, I., 1987. The relation of O2 microstarification of mud surface to the ecology of profoundalbottom fauna. Rep. Inst Freshwater Res. Vol. 32, pp: 8-12.
15
Cheimonopoulou,M.T.;Bobori,D.C.;Theocharopoulos, I. and Lazaridou, M., 2011. Assessing ecological water quality with macroinvertebrates and fish: a case study from a small Mediterranean river. Environmental Management. Vol. 47, No. 2, pp: 279-290.
16
Czeniawska-Kusza, I., 2005. Comparing modified biological monitoring working party score system and several biological indices based on macroinvertebrates for water quailty assessment. Limnologica. Vol. 35, pp: 169-176.
17
Dalu, T.; Lenin, D.C.; Tamuka, N.; Tatenda, D. and Lenin, D.C., 2013. 'First results on bathymetry, stratification and physicochemical limnology of a small tropical African reservoir (Malilangwe, Zimbabwe)'. Water SA. Vol. 39, pp: 119-130.
18
Davies, B.R. and Day, J.A., 1998. Vanishing Waters. University of Cape Town Press, Cape Town.
19
Dos Santos, D.A.; Molineri, C.; Reynaga, M.C. and Basualdo, C., 2011. Which index is the best to assess stream health? Ecological Indicator. Vol. 11, No. 2, pp: 582-589.
20
Ferreira, A.R.L.; Sanches Fernandes, L.F.; Cortes, R.M.V. and Pacheco, F.A.L., 2017. Assessing anthropogenic impacts on riverine ecosystems using nested partial least squares regression. Sci. Total Environ. Vol. 583, pp: 466-477.
21
Galbrand, C.; Lemieux, I.G.; Ghaly, A.E.; Côté, R. and Verma, M., 2007. Assessment of constructed wetland biological integrity using aquatic macro invertebrates. OnLine Journal of Biological Sciences. Vol. 7, pp: 52-65.
22
Hepp, L.U.; Milesi, S.V.; Biasi, C. and Restello, R.M., 2010. Effects of agricultural and urban impacts on macroinvertebrates assemblages in streams (Rio Grande do Sul, Brazil). Zoologia. Vol. 27, pp: 106-113.
23
Hilsenhoff, W.L., 1988. Rapid field assessment of organic pollution with a family level biotic index. J. N. Am. Benthol. Soc. Vol. 7, pp: 65-68.
24
Jiang, X.M.; Jing, X.; Jian-Wen, Q.; Jin-Ming, W.; Jian Wei, W. and Zhi-Cai, X., 2010. Structure of Macroinvertebrate Communities in Relation to Environmental Variables in a Subtropical Asian River System. International Review of Hydrobiology. Vol. 95, pp: 42-57.
25
Johnson, R.K.; Mike, T.; Furse, D. and Leonard, S., 2007. Ecological relationships between stream communities and spatial scale: implications for designing catchment-level monitoring programmes. FreshwaterBiology. Vol. 52, pp: 939-958.
26
Lydy, M.J.; Crawford, C.G. and Fery, J.W., 2000. A comparison of selected diversity. Similarity and biotic indices for detecting changes in benthic-invertebrate community structure and stream quality. Archives of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 39, pp: 469-479.
27
Mahboobi Soofiani, N.; Hatami, R.; Hemami, M.R. and Ebrahimi, E., 2012. Effects of trout farm effluent on water quality and the macrobenthic invertebrate community of the Zayandeh-Roud River, Iran. North American Journal of Aquaculture. Vol. 74, No. 2, pp: 132-141.
28
Malvaer, J.; Knutzen, J.; Magnusson, J.; Rygg, B.; Skei, J. and Sorensen, P., 1997. Classification of Environmental Quality in Fjords and Coastal Waters. SFT guidelines. Vol. 97, pp: 3-36.
29
McLaughlin, D.B. and Kenneth, H., 2017. A Bayesian network assessment of macroinvertebrate responses to nutrients and other factors in streams of the Eastern Corn Belt Plains, Ohio, USA. EcologicalModelling. Vol. 345, pp: 21-29.
30
Merritt, R.W. and Cummins, K.W., 1996. An introduction to the aquatic insects of North America. Kendall/Hunt, Dubuque, IA. 862 p.
31
Merz, J.E.; Chan, O. and Leigh, K., 2005. Effects of gravel augmentation on macroinvertebrate assemblages in a regulated California river. River Research and Applications. Vol. 21, No. 1, pp: 61-74.
32
Munyika, S., 2014. River health assessment using macroinvertebrates and water quality parameters: A case of the Orange River in Namibia. Physics and Chemistry of the Earth. pp: 140-148.
33
Nemati, M.; Ebrahimi, E.; Mirghafari, N. and Safianian, A., 2010. Biological assessment of the Zayandehrud River, Iran, using benthic macro invertebrate. Limnologica Ecology and Management of Inland Waters. Vol. 40, No. 3, pp: 226-232.
34
Paine, R.T., 1996. Food web complexity and species diversity, Am. Nat. Vol. 100, pp: 65-75.
35
Prouty, N.G.; Campbell, P.L.; Mienis, F.; Duineveld, G.; Demopoulos, A.W.J.; Ross, S.W. and Brooke, S., 2016. Impact of Deepwater Horizon spill on food supply to deep-sea benthos communities. Estuarine Coastal and Shelf Science. Vol. 169, pp: 248-264.
36
Ramachandra, T.V.; Ahalya, N. and Murthy, C.R., 2005. Aquatic ecosystems conservation, restoration and management. Capital Publishing Company. New Delhi. pp: 27-50.
37
Rosenberg, D.M., 2004. Biological Monitoring of freshwater- benthic Macroinvertebrate, Background, Diversity and Biotic Index, Taxa tolerance value, soil and water conservation society of metro Halifax (SWCSMH).
38
Schultz, R. and Dibble, E., 2012. Effects of invasive macrophytes on freshwater fish and macroinvertebrate communities: the role of invasive plant traits. Hydrobiologia. Vol. 684, No. 1, pp: 1-14.
39
Stefanidis, K.; Panagopoulos, Y. and Mimikou, M., 2016. Impact assessment of agricultural driven stressors on benthic macroinvertebrates using simulated data, Science of The Total Environment. Vol. 540, pp: 32-42.
40
Stephens, W.W. and Farris, J.L., 2004. Instream community assessment of aquaculture effluents. Aquaculture. Vol. 23, No. 1, pp: 149-162.
41
Tchakonté, S.; Gideon, A.A.; Dramane, D.; Adama, I.C. and Pierre, N., 2014. Diversity, dynamic and ecology of freshwater snails related to environmental factors in urban and suburban streams in Douala Cameroon (Central Africa). Aquatic Ecology. Vol. 48, pp: 379-95.
42
Wang, L.; Lyons, J.; Kanehl, P. and Gatti, R., 1997. Influences of watershed land use on habitat quality and biotic integrity in Wisconsin streams. Fisheries. Vol. 22, No. 6, pp: 6-12.
43
Washington, H.G., 2003. Diversity, biotic, similarity indices. A review with special relevance to aquatic ecosystems. Water research. Vol. 18, pp: 653-694.
44
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی ماکروبنتوزهای بخش ابتدایی رودخانه کن در استان تهران
این مطالعه به منظور شناسایی ماکروبنتوزهای بخش ابتدایی رودخانه کن در دو فصل تابستان و پاییز سال 1394 انجام گردید. در منطقه مورد بررسی پنج ایستگاه بالای امامزاده داود، امامزاده داود، رندان، امامزاده نوربخش و نرسیده به سولقان انتخاب و با استفاده از سیستم GPS موقعیت جغرافیایی هر ایستگاه ثبت شد. نمونه برداری به وسیله کوادرات و به صورت فصلی بود. در این مطالعه بیش ترین فراوانی ماکروبنتوزها در فصل تابستان بود. در میان پنج ایستگاه تعیین شده برای نمونه برداری، ایستگاه امامزاده نوربخش در فصل تابستان با 142 عدد در مترمربع بیش ترین فراوانی و ایستگاه نرسیده به سولقان در فصل پاییز با 12 عدد در مترمربع کم ترین فراوانی را میان ایستگاه ها دارا بودند. در میان نمونه های شناسایی شده، رده حشرات با 99/2 درصد بیش ترین فراوانی را دارا بود و رده کرم های حلقوی کم تار 0/8 درصد فراوانی داشت. از میان نمونه های شناسایی شده، Culex sp. با فراوانی 213 عدد در مترمربع بیش ترین و Lumbricus terrestrisو Tipula sp. با فراوانی 2 عدد در مترمربع کم ترین را در میان گونه های شناسایی شده دارا بودند. براساس مقادیر شاخص زیستی HFBI، کیفیت آب از نظر میزان آلودگی در ایستگاه ها، در 2 طبقه کیفی، متوسط (ایستگاه بالای امام زاده داود)و نسبتاً ضعیف (ایستگاه های امام زاده داود، رندان، امامزاده نوربخش و نرسیده به سولقان) قرار داشتند.
http://www.aejournal.ir/article_107549_117e365a7f57913f18aac000ba722419.pdf
2020-06-21
389
400
10.22034/aej.2020.107549
شناسایی
ماکروبنتوز
شاخص زیستی
رودخانه کن
مریم
صرافیان
m.sarafian219@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین- پیشوا، ایران
AUTHOR
مریم
عیدی
maryameidi@gmail.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین- پیشوا، ایران
LEAD_AUTHOR
آریا
اشجع اردلان
a_ashjaardalan@yahoo.com
3
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
آتش برگ، ا.؛ احمدی، م. و محمدی زاده، ف.، 1388. معرفی ساختار جمعیت و فراوانی ماکروبنتوزهای رودخانه خبر در فصول مختلف سال. اولین همایش ملی شیلات و آبزیان ایران. صفحات 1 تا 13.
1
احمدی، م.ر.؛ و نفیسی بهاآبادی، م.، 1380. شناسایی موجودات شاخص بی مهره آب های جاری، انتشارات خبیر.
2
اسحقی نیموری، م.؛ پاتیمار، ر.؛ نادری جلودار، م. و جعفریان، ح.، 1391. ارزیابی کیفیت آب رودخانه بابلرود (استان مازندران) بر اساس شاخص زیستی هیلسنهوف. اولین همایش ملی الکترونیکی کشاورزی و منابع طبیعی پایدار. تهران. موسسه آموزش عالی مهر اروند. گروه ترویجی دوستداران محیط زیست. صفحات 1 تا 7.
3
اکبری، پ.، 1386. بررسی پراکنش ماکروبنتوزهای رودخانه زاینده رود و ارتباط آن ها با مواد آلی موجود در بستر در استان اصفهان. دومین همایش ملی کشاورزی بوم شناختی ایران، گرگان. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. صفحات 1 تا 17.
4
پذیرا، ع.؛ امامی، س.م.؛ کوه گردی، ا.؛ وطن دوست، ص. و اکرمی، ر.، 1387. اثر برخی عوامل محیطی بر تنوع زیستی ماکروبنتوزهای رودخانه های دالکی و حله بوشهر. مجله علمی شیلات ایران. سال 2، شماره 4، صفحات 65 تا 70.
5
جرجانی، س.؛ قلیچی، ا.؛ اکرمی، ر. و خیرآبادی، و.، 1387. ارزیابی شاخص زیستی آلودگی و فون کفزیان نهر مادرسو پارک ملی گلستان. مجله شیلات. سال 2، شماره 1، صفحات 41 تا 52.
6
جعفری، ع.، 1384. گیتاشناسی ایران، رودها و رودخانه ایران، جلد دوم. چاپ سوم، موسسه جغرافیایی و کارتوگرافی گیتاشناسی. تهران. ایران.
7
حاتمی، ر.؛ محبوبی صوفیانی، ن.؛ ابراهیمی، ع. و همامی، م.، 1390. ارزیابی اثر پساب آبزی پروری بر جوامع ماکروبنتوز و کیفیت آب رودخانه زاینده رود با استفاده از شاخص BMWP. مجله محیط شناسی. شماره 59، صفحات 43 تا 54.
8
حیدری، ن.؛ یزدیان، ح.؛ زهرایی، ز. و جعفرزاده حقیقی فرد، ن.، 1391. ارزیابی زیستی رودخانه کشکان رود براساس تنوع و ساختار جمعیتی ماکروبنتوزها. اولین همایش ملی حفاظت و برنامه ریزی محیط زیست. همدان. دانشگاه آزاد اسلامی واحد همدان. شرکت هم اندیشان محیط زیست فردا. صفحات 1 تا 11.
9
خاتمی، س.ه.؛ ریاضی، ب. و مدیری آثاری، س.ع.، 1386. بررسی کیفیت رودخانه کرج بر اساس تنوع خانواده های درشت بی مهرگان کفزی. مجله علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 9، شماره 1، صفحات 71 تا 78.
10
خسروانی، ش.؛ محمدی زاده، ف. و یحیوی، م.، 1393. ارزیابی زیستی رودخانه حاجی آباد (استان هرمزگان) با استفاده از ساختار جمعیت ماکروبنتوز. مجله بوم شناسی آبزیان. جلد 4، شماره 1، صفحات 35 تا 43.
11
روغنی زادگان، ن.؛ محمدی روزبهانی، م. و دهقان مدیسه، س.، 1391. ارزیابی زیستی رودخانه دز با استفاده از ساختار جوامع ماکروبنتیک و شاخص هیلسنهوف. اولین همایش بین المللی بحران های زیست محیطی ایران و راهکارهای بهبود آن. جزیره کیش. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات اهواز.
12
دادگر، ش.؛ چهرزاد، ف. و رزمی، ک.، 1393. بررسی اثرات کیفی استخرهای پرورش قزل آلای رنگین کمان بر رودخانه شاهرود با استفاده از شاخص ارزیابی سریع زیستی کفزیان Hilsenhoff. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 6، شماره 3، صفحات 143 تا 153.
13
طوسی، آ.؛ شجیعی، ه. و قلیچی، ا.، 1390. بررسی ساختار جمعیتی ماکروبنتوزهای شش چشمه در شمال شهرستان دامغان. فصلنامه زیست شناسی جانوری. سال 4، شماره 1، صفحات 57 تا 68.
14
صبا، م.ص.؛ نبوی، س.م.ب. و رجب زاده قطرمی، ا.، 1391. مطالعه ساختار و تنوع ماکروبنتوزهای رودخانه دز در محدوده پناهگاه حیات وحش دز در فصول پاییز و زمستان. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 4، شماره 13، صفحات 83 تا 91.
15
قریب خانی، م. و تاتینا، م.، 1387. توان تولید طبیعی رودخانه لوندویل آستارا براساس جوامع کفزیان. مجله شیلات. سال 2، شماره 4، صفحات 1 تا 14.
16
محمدی روزبهانی، م.؛ قنواتی، ز. و راسخ، ع.، 1391. ارزیابی زیستی رودخانه مارون با استفاده از شاخص BMWP و ساختار جمعیتی ماکروبنتوزها. دومین همایش ملی حفاظت و برنامه ریزی محیط زیست، همدان، شرکت هم اندیشان محیط زیست فردا.
17
مسگران کریمی، ج.؛ آذری تاکامی، ق.؛ خارا، ح. و عباسپور، ر.، 1390. ارزیابی کیفی آب رودخانه دو هزار تنکابن با استفاده از روش های سریع مطالعه موردی. اولین کنفرانس ملی راهکارهای دستیابی به توسعه پایدار. صفحات 1 تا 9.
18
ملازاده، ن.، 1393. ارزیابی وضعیت کیفی رودخانه ماربر با استفاده از شاخص های زیستی و فون ماکروبنتوز. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 6، شماره 19، صفحات 47 تا 56.
19
ممبینی، ش. و نبوی، س.م.ب.، 1391. مطالعه ساختار اجتماعات ماکروبنتیک به عنوان شاخص های آلایندگی در رودخانه جراحی (محدوده مقبره سیدعاشور تا ورودی شهر شادگان). مجله علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 4، شماره 1، صفحات 117 تا 125.
20
موسوی ندوشن، ر.؛ سامان پژوه، م.؛ عمادی، ح. و فاطمی، س.م.، 1390. ساختار جمعیت موجودات ماکروبنتوز در دریاچه نئور اردبیل. مجله علمی شیلات ایران. سال 20، شماره 3، صفحات 129 تا 142.
21
Covich, A.; Palmer, M. and Crowl, T., 1999. The role of Benthic Invertebrate Species in Freshwater Ecosystems: zoobenthic species influence energy flows and nutrient cycling. Journal of Bioscience Vol. 49, N. 2, pp: 119-127.
22
Davide, T. and Marco, S., 2010. Collection & identification of macrobenthic invertebrates. NEAR Curriculum in Natural Environmental Science. Vol. 88, pp: 253-261.
23
Hilsenhoff, W.L. 1988. Rapid field assessment of organic pollution with a family- level biotic index. J of the North American Benthological Society. Vol. 7, No. 1, pp: 65-68.
24
ORIGINAL_ARTICLE
طبقه بندی خلیج گرگان با استفاده از شاخص های اکولوژیک
در این پژوهش وضعیت اکولوژیک بستر خلیج گرگان با استفاده از نتایج شاخص های زیستی و شاخص تنوع طبقه بندی شده است. برای این منظور داده های مربوط به ماکروبنتوزها و ویژگی های رسوب خلیج طی سال 91-1390 از 22 نقطه به ثبت رسید. با توجه به تغییرات عمق خلیج در بخش های مختلف، ایستگاه ها در چهار گروه عمق کم تر از1 متر ، 1-2 متر، 2-3 متر و بیش تر از 3 متر دسته بندی گردید. محدوده کل مواد آلی، شن، سیلت و رس در خلیج گرگان به ترتیب (8/4–6/2)، (51/7–37/6)، (57/7–47/1 ) و (4/7–1/3) درصد به ثبت رسید. ارتباط مثبت بین کل مواد آلی با بافت ریز دانه بستر گویای تجمع مواد آلی در اعماق بیش تر خلیج می باشد. آزمون های چند متغیره، اعماق کم تر خلیج را از اعماق بیش تر آن به لحاظ شرایط و پارامترهای محیطی به طور جداگانه دسته بندی کردند. دامنه تغییرات شاخص شانون، BO2A وM-AMBI در خلیج گرگان به ترتیب (1/69-0/96)، (0/06-0/02) و (0/8-0/6) محاسبه گردید. به طورکلی با توجه به میانگین کل شاخص های محاسبه شده، شانون وضعیت اکولوژیک کل خلیج را ضعیف و شاخص های BO2A و M-AMBI وضعیت خلیج گرگان را خوب ارزیابی کردند. از طرفی ارزیابی شاخص های مورد نظر، وضعیت اعماق کم تر خلیج به ویژه در بخش غربی را بهتر از اعماق بیش تر (بخش شرقی) نشان داده اند که می تواند به دلیل شرایط هیدوردینامیکی منطقه و شرایط نامساعدتر برای گونه های مختلف بنتیک به واسطه مجاورت با رودخانه قره سو و سایر ورودی های اطراف خلیج باشد.
http://www.aejournal.ir/article_107563_e49dd029699eff8e023db32580edc55f.pdf
2020-06-21
401
410
10.22034/aej.2020.107563
طبقه بندی
شاخص های اکولوژیک
ماکروبنتوز
خلیج گرگان
سید قاسم
قربان زاده زعفرانی
ghorbanzadeh110@yahoo.com
1
گروه تنوع زیستی و ایمنی زیستی، پژوهشکده محیط زیست و توسعه پایدار، سازمان حفاظت محیط زیست، تهران ، ایران
LEAD_AUTHOR
علی
ماشینچیان مرادی
ali2m@yahoo.com
2
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
علی رضا
ساری
alirezasari2003@gmail.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
سید کرامت
هاشمی عنا
hashemi.keramat@yahoo.com
4
گروه تنوع زیستی و ایمنی زیستی، پژوهشکده محیط زیست و توسعه پایدار، سازمان حفاظت محیط زیست، تهران، ایران
AUTHOR
سید محمدرضا
فاطمی
reza_fatemi@hotmail.com
5
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
باقری، ح.؛ بسطامی، ک.؛ شارمد، ت. و باقری، ز.، 1391. ارزیابی پراکنش آلودگی فلزات سنگین در خلیج گرگان. اقیانوس شناسی. سال 3، شماره 11، صفحات 65 تا 72.
1
شکری ساروی، م.؛ احمدی، م.ر.؛ رحمانی، ح. و کامرانی، ا.، 1394. ارزیابی کیفیت آب براساس شاخص های زیستی هیلسنهوف، تنوع شانن-وینر و شاخص های محیطی در رودخانه تجن. فصلنامه علوم و فنون شیلات. دوره 3، شماره 4، صفحات 43 تا 55.
2
قربانزاده زعفرانی، س.ق.؛ فاطمی، س.م.ر.؛ مرادی، ع.؛ موسوی، ر. و ساری، ع.ر.، 1393. پهنه بندی رسوبات بستر نرم در خلیج گرگان (دریای خزر) با استفاده از ماکروبنتوز به عنوان شاخص سلامت اکولوژیک. رساله دکتری بوم شناسی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات، تهران.
3
موسوی، س.م.، 1386. پراکنش و نوسانات فصلی ماکروبنتوزهای خلیج گرگان. پایان نامه کارشناسی ارشد بیولوژی دریا. دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی نور. دانشگاه تربیت مدرس.
4
Albayrak, S.; Balkis, N.; Balkis, H.; Zenetos, A.; Kurun, A.; Karhan, S.U.; Caglar, S. and Balci, M., 2010. Golden Horn Estuary: Description of the ecosystem and an attempt to assess its ecological quality status using various classification metrics. Mediterranean Marine Science. Vol. 11, No. 2, pp: 295-314.
5
Bastami, K.D.; Taheri, M.; Bagheri, H.; Foshtomi, M.Y.; Ganji, S. and Haghparast, S., 2014. Response of sediment dwelling annelida community in relation to geochemical parameters in the Gorgan Bay, Caspian Sea. International Journal of Environmental Science and Technology. Vol. 11, No. 7, pp: 2025-2036.
6
Blanchet, H.; Lavesque, N.; Ruellet, T.; Dauvin, J.C.; Sauriau, P.G.; Desro, N.; Desclaux, C.; Leconte, M.; Bachelet, G.; Janson, A.L.; Bessineton, C.; Duhamel, S.; Jourde, J.; Mayot, S.; Simon, S. and de Montaudouin, X., 2008. Use of biotic indices in semienclosed coastal ecosystems and transitional water habitats. Implications for the implementation of the European Water Framework Directive. Ecological Indicators. Vol. 8, No. 4, pp: 360-372.
7
Borja, A.; Bald, J.; Franco, J.; Larreta, J.; Muxika, I.; Revilla, M.; Rodriguez, J.G.; Solaun, O.; Uriarte, A. and Valencia, V., 2009. Using multiple ecosystem components in assessing ecological status in Spanish (Basque country) Atlantic marine waters. Marine Pollution Bulletin. Vol. 59, pp: 54-64.
8
Dauvin, J.C. and Ruellet, T., 2009. The estuarine quality paradox: Is it possible to define an ecological quality status for specific modified and naturally stressed estuarine ecosystems? Marine Pollution Bulletin. Vol. 59, pp: 38-47.
9
Ghorbanzadeh Zaferani, S.G.; Machinchian Moradi, A.; Mousavi Nadushan, R.; Sari, A.R. and Fatemi, S.M.R., 2017. Spatial and temporal patterns of benthic macrofauna in Gorgan Bay, south Caspian Sea, Iran. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 16, No. 1, pp: 252-274.
10
Giovanardi, F. and Tromellini, E., 1992. Statistical assessment of trophic conditions, Application of OECD.
11
Grall, J. and Glemarec, M., 1997. Using biotic indices to estimate macrobethic community perturbations in the Bay of Brest. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 44, pp: 43-53.
12
http://www.azti.es
13
Ignatiadas, L.; Karydis, M. and Vounatosou, P., 1992. A Possible Method for Evaluating Oligotrophy. Marine Pollution Bulltein. Vol. 24, No. 5, pp: 238-243.
14
Jorgensen, S.E.; Costanza, R. and Xu, F., 2005. Handbook of ecological indicators for assessment of ecosystem health. CRC Press. 439 p.
15
Kenny, M.A.; Sutton-Grier, A.E.; Smith, R.F. and Gresens, S.E., 2009. Benthic macroinvertebrates as indicators of water quality: The e intersection of science and policy. Journal of Terrestrial Arthropod. Vol. 2, pp: 99-128.
16
Lenat, D., 1993. A biotic index for southeastern United Sataes, Derivation and list of tolerance values with criteria for assessing water quality ratings. Journal of the North American Benthological Society. Vol. 12, No. 179-290.
17
Mora, S.D. and Sheikholeslami, M.R., 2002. ASTP: Contaminant Screening Program: Final report: Interpretation of Caspian Sea sediment data. Caspian Environment Program (CEP). 27 p.
18
Roberts, R.D.; Gregory, M.R. and Foster, B.A., 1998. Developing an efficient macrofauna monitoring index from an impact study a dredge spoil example. Marine Pollution Bulletin. Vol. 36, pp: 231-235.
19
Shannon, C.E. and Weaver, W., 1949. The Mathematical Theory of Communication. Urbana, University of Illinois Press. 117 p.
20
Sharbaty, S., 2011. Two dimensional simulation of flow pattern in Gorgan Bay by using Mike21 software. Journal of Water and Soil Conservation, Vol. 18, No. 4. http://jwfst.gau.ac.ir.
21
Sharma, K.K. and Chowdhary, S., 2011. Macro invertebrates assemblages as biological indicators of pollution in a Central Himalayan River, Tawi (J&K). International Journal of Biodiversity and Conservation. Vol. 3, No. 5, pp: 167-174.
22
Simboura, N. and Reizopoulou, S., 2008. An inter calibration of classification metrics of benthic macroinvertebrates in coastal and transitional ecosystems of the Eastern Mediterranean ecoregion (Greece). Marine Pollution Bulletin. Vol. 56, pp 116-126.
23
Teabi, S.; Etemad-shahidi, A. and Fardi, G., 2005. Examination of three eutrophication indices to haracterize water quality in the north east of the Persian golf. Coastal Reaserch. Vol. 42, pp: 405-411.
24
Vollenweider, R.A.; Rinaldi, A. and Montanari, G., 1998. Eutrophication, structure and dynamics of a marine coastal system: results of ten years monitoring along the Emilia Romagna coast (Northwest Adriatic Sea), in Marine Coastal Eutrophication (ed. Vollenweider, R.A.; Marchetti, R. and Viviani, R.,). J. Science of the Total Environment, Elsevier, Amsterdam. Vol. 1992, pp: 63-106.
25
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه برخی خاصیت های آنتی باکتریایی و آنتی اکسیدانی عصاره آبی جلبک قهوه ای (Sargassum tenerrimum) جمع آوری شده از سواحل خلیج فارس
امروزه اهمیت جلبک ها به عنوان منابع مهم غذایی، دارویی و صنعت در حال پیشرفت می باشد. مطالعه حاضر جهت تعیین مقدار فعالیت های ضدباکتریایی و آنتی اکسیدانی عصاره آبی جلبک قهوه ای Sargassum tenerrimum سواحل خلیج فارس انجام شد. آزمایش های انجام شده در این پژوهش شامل سنجش فعالیت آنتی اکسیدانی کل، فنل کل، توانایی شلاته کنندگی یون آهن، فعالیت مهار رادیکال آزاد DPPH و سوپراکسید بوده که نشان داد عصاره استخراج شده از جلبک قهوه ای S. tenerrimum توانایی بالایی در خاصیت آنتی اکسیدانی دارد (0/05>p). هم چنین ﻣﻘﺎوم ﺷﺪن ﺑﺴﻴﺎری از ﺑﺎﻛﺘﺮی ﻫﺎی ﺑﻴﻤﺎریزا در ﺑﺮاﺑﺮ داروﻫﺎی مصنوعی و ﻋﻮارض ﺟﺎﻧﺒﻲ و ﮔﺮاﻧﻲ داروﻫﺎی ﺷﻴﻤﻴﺎﻳﻲ ﺗﻮﺟﻪ داﻧﺸﻤﻨﺪان را ﺑﻪ ﺳﻤﺖ داروﻫﺎی ﻃﺒﻴﻌﻲ و ﮔﻴﺎﻫﻲ ﻣﻌﻄﻮف ﻛﺮده اﺳﺖ از این رو خاصیت ضدباکتریایی در برابر هفت گونه باکتری مختلف بیماریزا و غیربیماریزا مورد ارزیابی قرار گرفت. باکتری Yersinia ruckeri تنها باکتری مقاوم به عصاره مشخص شد (0/05<p). طبق نتایج این مطالعه، عصاره جلبک قهوه ای S. tenerrimum می تواند به عنوان ترکیب باکتری کش و آنتی اکسیدان به مصرف غذایی، دارویی و آرایشی و بهداشتی برسد.
http://www.aejournal.ir/article_107580_69a713509c50ccf925f0ace9c7fb5ea7.pdf
2020-06-21
411
418
10.22034/aej.2020.107580
جلبک قهوه ای
فعالیت ضدباکتریایی
فعالیت آنتی اکسیدانی
DPPH
سمیرا
شاه حسینی
mmmm_samira@yahoo.com
1
گروه فرآوری محصولات شیلاتی، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
معظمه
کردجزی
kordjazi.m@gmail.com
2
گروه فرآوری محصولات شیلاتی، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
سامان
احمدنصرالهی
3
مرکز آموزش و پژوهش بیماری های پوست و جذام، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
AUTHOR
سیدمهدی
اجاق
4
گروه فرآوری محصولات شیلاتی، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
عاطفه
نعیمی فر
5
مرکز آموزش و پژوهش بیماری های پوست و جذام، دانشگاه علوم پزشکی تهران، تهران، ایران
AUTHOR
سلیم
شریفیان
6
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
AUTHOR
سفری، پ.؛ رضایی، م.؛ شویک لو، ا.ر.؛ گرمسیری، ا. و باباخانی لشکان، آ.، 1394. تعیین فعالیت آنتی اکسیدانی و میزان فنل کل دو گونه جلبک دریایی خلیج فارس Chaetomorpha و Colpumenia sinusa در شرایط آزمایشگاهی. مجله علوم و فنون دریایی. دوره 14، شماره 1، صفحات 64 تا 77.
1
پیمانی، ج.؛ قرایی، ا.؛ غفاری، م. و طاهری، ع.، 1393. بررسی اثرات ضدباکتریایی و ضدقارچی جلبک دریایی (Gracilaria arcuata) از سواحل چابهار. مجله دانشگاه علوم پزشکی قم. دوره 8، شماره 1، صفحات 75 تا 69.
2
Andersson, D.I. and Hughes, D., 2010. Antibiotic resistance and its cost: is it possible to reverse resistance? Nature Reviews Microbiology. Vol. 8, 260 p.
3
Austin, B. and Austin, D.A., 2007. Characteristics of the diseases. Bacterial Fish Pathogens: Diseases of Farmed and Wild Fish. pp: 15-46.
4
Bulfon, C.; Volpatti, D. and Galeotti, M., 2014. In vitro antibacterial activity of plant ethanolic extracts against fish pathogens. Journal of the world aquaculture society. Vol. 45, pp: 545-557.
5
Cox, S.; Abu-Ghannam, N. and Gupta, S., 2010. An assessment of the antioxidant and antimicrobial activity of six species of edible Irish seaweeds. International Food Research Journal. Vol. 17, pp: 205-220.
6
El-Din, S.M. and Alagawany, N.I., 2019. Phytochemical Constituents and Anticoagulation Property of Marine Algae Gelidium crinale, Sargassum hornschuchii and Ulva linza. Thalassas: An International Journal of Marine Sciences. Vol. 35, pp: 381-397.
7
FAO. 2014. Fishery and Aquaculture Statistics Yearbook. FAO Publications. Rome. Italy. P: 103. Retrieved from FAO. http://faostat3.fao.org.
8
Fleurence, J.; Le Coeur, C.; Mabeau, S.; Maurice, M. and Landrein, A., 1995. Comparison of different extractive procedures for proteins fromthe edible seaweeds Ulva rigida and Ulva rotundata. Journal of Applied Phycology. Vol. 7, pp: 577-582.
9
Huang, C.Y.; Wu, S.J.; Yang, W.N.; Kuan, A.W. and Chen, C.Y., 2016. Antioxidant activities of crude extracts of fucoidan extracted from Sargassum glaucescens by a compressional-puffing hydrothermal extraction process. Food chemistry. Vol. 197, pp: 1121-1129.
10
Hussain, A.I.; Anwar, F.; Sherazi, S. T. H. and Przybylski, R., 2008. Chemical composition, antioxidant and antimicrobial activities of basil (Ocimum basilicum) essential oils depends on seasonal variations. Food chemistry. Vol. 108, pp: 986-995.
11
Kandhasamy, M. and Arunachalam, K.D., 2008. Evaluation of in vitro antibacterial property of seaweeds of southeast coast of India. African Journal of Biotechnology. Vol. 7, No. 12, pp: 1958-1961.
12
Karthikaidevi, G.; Manivannan, K.; Thirumaran, G.; Anantharaman, P. and Balasubaramanian, T., 2009. Antibacterial Properties of Selected Green Seaweeds from Vedalai Coastal Waters; Gulf of Mannar Marine Biosphere Reserve. Global Journal of Pharmacology. Vol. 3, pp: 107-112.
13
Kokilam, G.; Vasuki, S. and Sajitha, N., 2013. Biochemical composition, alginic acid yield and antioxidant activity of brown seaweeds from Mandapam region, Gulf of Mannar. Journal of Applied Pharmaceutical Science. Vol. 3, pp: 99-104.
14
Kuda, T.; Tsunekawa, M.; Goto, H. and Araki, Y., 2005. Antioxidant properties of four edible algae harvested in the Noto Peninsula, Japan. Journal of food composition and analysis. Vol. 18, pp: 625-633.
15
Lim, S.N.; Cheung, P.C.K.; Ooi, V.E.C. and Ang, P.O., 2002. Evaluation of antioxidative activity of extracts from a brown seaweed, Sargassum siliquastrum. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 50, pp: 3862-3866.
16
Narayani, C.G.S.; Arulpriya, M.; Ruban, P.; Anantharaj, K. and Srinivasan, R., 2011. In vitro antimicrobial activities of seaweed extracts against human pathogens. Journal of Pharmacy Research. Vol. 4, pp: 2076-2077.
17
Payghami, N.; Jamili, S.; Rustaiyan, A.; Saeidnia, S.; Nikan, M. and Gohari, A.R., 2015. Alpha-amylase inhibitory activity and sterol composition of the marine algae, Sargassum glaucescens. Pharmacognosy research. Vol. 7, 314 p.
18
Pinteus, S.; Alves, C.; Monteiro, H.; Araujo, E.; Horta, A. and Pedrosa, R., 2015. Asparagopsis armata and Sphaerococcus coronopifolius as a natural source of antimicrobial compounds. World Journal of Microbiology and Biotechnology. Vol. 31, pp: 445-451.
19
Rodriguez-Jasso, R.M.; Mussatto, S.I.; Pastrana, L.; Aguilar, C.A. and Teixeira, J.A., 2013. Extraction of sulfated polysaccharides by autohydrolysis of brown seaweed Fucus vesiculosus. Journal of Applied Phycology. Vol. 25, pp: 31-39.
20
Rodriguez-Meizoso, I.; Marin, F.R.; Herrero, M.; Senorans, F.J.; Reglero, G.; Cifuentes, A. and Ibanez, E., 2006. Subcritical water extraction of nutraceuticals with antioxidant activity from oregano. Chemical and functional characterization. Vol. 41, pp: 1560-1565.
21
Sanchez-Machado, D.I.; Lopez-Cervantes, J.; Lopez Hernandez, J. and Paseiro-Losada, K., 2004. Fatty acids, total lipid, protein and ash contents of processed edible seaweeds. Food Chemistry. Vol. 85, pp: 439-444.
22
Sanjeewa, A.K.K.; Kim, E.; Son, K. and Jeon, Y., 2016. Bioactive properties and potentials cosmeceutical applications of phlorotannins isolated from brown seaweeds. Journal of Photochemistry and Photobiology. Vol. 162, pp: 100-105.
23
Sathya, R.; Kanaga, N.; Sankar, P. and Jeeva, S., 2017. Antioxidant properties of phlorotannins from brown seaweed Cystoseira trinodis (Forsskål) C. Agardh. Arabian Journal of Chemistry. Vol. 10, pp: S2608-S2614.
24
Shanmughapriya, S.; Manilal, A.; Sujith, S.; Selvin, J.; Kiran, G.S. and Natarajaseenivasan, K., 2008. Antimicrobial activity of seaweeds extracts against multiresistant pathogens. Annals of Microbiology. Vol. 58, pp: 535-541.
25
Sujatha, R.; Siva, D. and Nawas, P., 2019. Screening of phytochemical profile and antibacterial activity of various solvent extracts of marine algae Sargassum swartzii. World Scientific News. Vol. 115, pp: 27-40.
26
Taga, M.S.; Miller, E.E. and Pratt, D.E., 1984. Chia seeds as a source of natural lipid antioxidants. Journal of the American Oil Chemists’ Society. Vol. 61, pp: 928-931.
27
Vallinayagam, K.; Arumugam, R.; Kannan, R.R.R.; Thirumaran, G. and Anantharaman, P., 2009. Antibacterial activity of some selected seaweeds from Pudumadam coastal regions. Global Journal of Pharmacology. Vol. 3, pp: 50-52.
28
Wang, J.; Zhang, Q.; Zhang, Z. and Li, Z., 2008. Antioxidant activity of sulfated polysaccharide fractions extracted from Laminaria japonica. International Journal of Biological Macromolecules. Vol. 42, pp: 127-132.
29
Zargari, A.; Mazandarani, M. and Hoseini, S.M., 2018. Effects of safflower (Carthamus tinctorius) extract on serum antibacterial activity of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) against Aeromonas hydrophila, Streptococcus iniae and Yersinia ruckeri. International Journal of Aquatic Biology. Vol. 6, pp: 1-7.
30
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی نوسانات میزان مواد مغذی و کلروفیل a در آبهای ساحلی بوشهر تا دلوار
به منظور بررسی کیفیت آب مناطق ساحلی و ایجاد پیشینه مناسب برای انجام پایش های زیست محیطی، کیفیت آب منطقه ساحلی شهرستان بوشهر تا منطقه دلوار از طریق پایش عوامل آمونیاک، نیترات، نیتریت، فسفات محلول (ارتوفسفات)، سیلیکات، کلروفیل a و کل مواد معلق در طی 5 فصل، از بهار 1393 تا بهار 1394، در 10 ایستگاه انتخابی جفره، جلالی، دستک، سرتل، هلیله، بندرگاه، نیروگاه، بوشهر، پیازی و دلوار در اعماق کم تر از 10 متر، مورد اندازه گیری قرار گرفت و اطلاعات حاصل با استفاده از نرم افزار آماری SPSS و آزمونهای آنالیز واریانس یک طرفه (ANOVA) و توکی (Tukey)، مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت. نتایج گویای آن بود که دامنه نوسانات آمونیاک، نیترات، نیتریت، فسفات محلول (ارتوفسفات)، سیلیکات و کل مواد معلق به ترتیب 0/123-0/04، 0/0944-0/003، 0/0212-0/0013، 1/812-0/010، 1/257-0/147 و 44/67-21/93 میلی گرم بر لیتر و کلروفیل a برابر 2/77-0/37 میلی گرم بر مترمکعب بوده است. مقایسه تغییرات میزان عوامل مورد بررسی در ایستگاه های مختلف نشان داد که به غیر از مقادیر کل مواد معلق در فصل های پاییز و بهار و فسفات محلول در فصل تابستان، غلظت سایر فاکتورها طی یک سال پایش، در دامنه نوسانات طبیعی منطقه مورد بررسی بوده است.
http://www.aejournal.ir/article_107612_4a51d7f270f58d681dfa11a2b9e5ab10.pdf
2020-06-21
419
426
10.22034/aej.2020.107612
مواد مغذی
کلروفیل a
خلیج فارس
آب های ساحلی بوشهر
سهیلا
امیدی
smomidi@gmail.com
1
پژوهشکده میگوی کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
محسن
نوری نژاد
m.noorinezhad@gmail.com
2
پژوهشکده میگوی کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران
AUTHOR
عبدالرسول
مرزبانی
marzbani@gmail.com
3
پژوهشکده میگوی کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران
AUTHOR
عبدالرسول
اسماعیلی
esmaeili@gmail.com
4
پژوهشکده میگوی کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران
AUTHOR
علی
کاویانی
kaviani@gmail.com
5
پژوهشکده میگوی کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران
AUTHOR
امیدی، س.، 1378. بررسی کیفیت آب های ورودی و خروجی استخرهای پرورشی سایت حله بوشهر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 45 صفحه.
1
امیدی، س.، 1380. بررسی اثرات آبزی پروری بر محیط زیست در منطقه حله بوشهر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 55 صفحه.
2
امیدی، س.، 1381. بررسی اثرات آبزی پروری بر محیط زیست در مناطق حله و دلوار بوشهر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 60 صفحه.
3
امیدی،س.،1382. بررسی اثرات آبزی پروری بر محیط زیست در مناطق حله و مند. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 90 صفحه.
4
امیدی، س.، 1383. بررسی اثرات آبزی پروری بر محیط زیست در مناطق حله و دلوار. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 80 صفحه.
5
امیدی، س.، 1385. بررسی اثرات آبزی پروری بر محیط زیست در مناطق حله، دلوار و شیف بوشهر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 90 صفحه.
6
امیدی، س.، 1386. بررسی اثرات آبزی پروری بر محیط زیست در مناطق حله و مند. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 80 صفحه.
7
آیین جمشید، خ.، 1391. بررسی اثرات کشند قرمز بر مزارع پرورشی در استان بوشهر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 65 صفحه.
8
ایزدپناهی، غ.، 1373. بررسـی فاضلاب های شهری بوشهر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 30 صفحه.
9
بلاک، ج. آ.، 1364. تکنولوژی آب های آلوده. ترجمه بنازاده ماهانی، م.ر. و سمنارشاد، ع.ا. انتشارات جهاددانشگاهی. 350 صفحه.
10
بنان، غ.، 1370. محیط زیست انسان و راه های جلوگیری از آلودگی آن. انتشارات انجمن ملی حفاظت منابع طبیعی و محیط انسانی.
11
خورشیدیان، ک. و شعبانی، م.ج.، 1390. بررسی برخی از شاخص های وضعیت ذخایر در استان بوشهر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 50 صفحه.
12
فاطمی، م.ر. و عبایی، م.، 1382. ترجمه وضعیت محیط زیست دریایی خلیج فارس (محدوده دریایی راپمی). سازمان حفاظت محیط زیست. صفحات 203 تا 226.
13
محیط زیست. 1378. استاندارد خروجی فاضلاب. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست.
14
مطلبی، ع.ع.، 1391. پایش کشند قرمز در خلیج فارس و دریای عمان. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 120 صفحه.
15
Arai, M.N., 2001. Pelagic coelenterates and eutrophication: a review. Hydrobiologia. Vol. 451, pp: 69-87.
16
Ball, I.R., 1967. The relative susceptibility of some species of freshwater fish to poisons- ammonia. Water Res. Vol. 1, No. 7, pp: 67-75.
17
Brodeur, R.D.; Decker, M.B.; Ciannelli, L.; Purcell, J.E.; Bond, N.A.; Stabeno, P.J.; Acuna, E. and Hunt Jr., G.L., 2008. Rise and fall of jellyfish in the eastern Bering Sea in relation to climate regime shifts. Progress of Oceanography. Vol. 77, pp: 103-111.
18
Chen, J.C.; Chin, T.S. and Lee, C.K., 1986. Effect of ammonia and nitrite on larval development of the shrimp (Penaeus monodon). Asian Fisheries Society, Manila, Philippines, pp: 657-662.
19
Chen, J.C.; Liu, Y.T. and Lee, C.K., 1989. Highly intensive culture study of tiger Penaeus monodon in Taiwan. European Aquaculture Society, Breden, Belgium, pp: 377-382.
20
Chin, T.S. and Chen, J.C., 1988. Acute toxicity of ammonia to larvae of tiger prawn Penaeus monodon. Aquaculture. Vol. 66, pp: 247-253.
21
Colt, J.E. and Amstrong, D.A., 1981. Nitrogen toxicity to crustaceans, fish and molluscs. Bio engineering Symposium for Fish Culture. pp: 34-47.
22
Dierbery, F.E. and Kiattisimkul, W., 1996. Issues, Impacts and Implications of Shrimp Aquaculture in Thailand, Environ. Manage. Vol. 20, Thailand.
23
Dong, H.p.; Wang, D.Z.; Dai, M. and Hong, H.Sh., 2010. Characterization of particulate organic matters in the water column of the South China Sea using a shotgun proteomic approach. Limnol. Oceanogr. Vol. 55, No. 4, pp: 1565-1578. The American Society of Limnology and Oceanography, Inc. doi:10.4319/lo.2010.55.4.1565.
24
ECO-ZIST, Consulting Engineers. 1978. Atomic Energy Organization of Iran, Volume I, II.
25
Epifanio, E.C. and Srna, R.F., 1975. Toxicity of ammonia, nitrite ion, nitrate ion and orthophosphate to Mercenaria mercenaria and Crassostrea virginica. Mar. Biol. Vol. 33, No. 3, pp: 241-246.
26
Franson, M.A.H.; Eaton, A.D.; Clesceri, L.S.; Rice, E.W. and Greenberg, Q.E., 2005. Standard Methods for the Examination of water and wastewater, 21st Edition. American Public Health Association.
27
Graham, W.M., 2001. Numerical increases and distributional shifts of Chrysaora quinquecirrha (Desor) and Aurelia aurita (Linne) (Cnidaria: Schyphozoa) in the northern Gulf of Mexico. Hydrobiologia. Vol. 451, pp: 97-111.
28
Hach Company. 2002. DR/4000 Spectrophotometer procedure manual. USA: Hach Company.
29
Lo, W.T. and Chen, I.L., 2008. Population succession and feeding of scyphomedusae, Aureliaaurita, in a eutrophic lagoon in Taiwan. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 76, pp: 227-238.
30
Lynam, C.P.; Gibbons, M.J.; Axelsen, B.E.; Sparks, C.A.J.; Coetzee, J.; Heywood, B.G. and Brierley, A.S., 2006. Jellyfish overtake fish in a heavily fished ecosy stem. Curr Biol. Vol. 16, pp: R492-R493.
31
Hoover, R.A. and Purcell, J.E., 2009. Substrate Preferences of scyphozoan Aurelia labiates polyps among common deck building materials. Hydrobiologia J. Vol. 616, pp: 259-267.
32
Magazine-Water Condition and purification. 2005. http://www.lenntech.com/WHO-EU-water-standards.htm.
33
Mills, C.E., 2001. Jellyfish blooms: are populations increasing globally in response to changing ocean conditions? Hydrobiologia. Vol. 451, pp: 55-68.
34
Sale, P.F.; Feary, D.A.; Burt, J.A.; Bauman, A.G.; Cavalcante, G.H.; Drouillard, K.G.; Kjerfve, B.; Marquis, E.; Trick, C.G.; Usseglio, P. and Van Lavieren, H., 2010. The growing need for sustainable ecological management of marine communities of the Persian Gulf. Institute for Water, Environment and Health, United Nations University, Hamilton, ON, Canada. Royal Swedish Academy of Sciences.
35
Samocha, T.M. and Lawrence, A.L., 1995. Shrimp farms, Effluent Waters, Environmental Impact and Potential Treatment Methods, Corpus Christi, Texas.
36
Purcell, J.E. and Arai, M.N., 2001. Interactions of pelagic cnidarians and ctenophores with fish: a review. Hydrobiologia. Vol. 451, pp: 27-44.
37
ROPME. 2010. Manual of Oceanographic Observation and Pollutant Analysis Methods (MOOPAM), second Publication Kuwait. 374 p.
38
Wajsbrot, N.; Gasith, A.; Krom, M.D. and Samocha, T.M., 1990. Effect of dissolved oxygen and moult stage on the acute toxicity of ammonia to juvenile green tiger prawn Penaeus semisulcatus. Environ. Toxicol. Chem. Vol. 9, pp: 497-504.
39
Wickins, J.F., 1976. The tolerance of warm-water prawns to recirculated water. Aquaculture. Vol. 29, pp: 347-357.
40
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی وضعیت حقوقی – زیست محیطی پارک ملی بمو از منظر تخریب و تجاوز
با توجه به ارزش حفاظتی پارک ملی بمو، کاربری هایی در داخل و محدوده اطراف پارک وجود دارند که دارای اثرات و پیامدهای مستقیم و غیرمستقیم بر پارک است. این پارک یکی از زیستگاه های مهم حیات وحش در جنوب غرب ایران می باشد که مورد تهدید و تعارضات انسانی واقع شده است. هدف از این تحقیق بررسی وضعیت حقوقی – زیست محیطی پارک ملی بمو به ویژه از جهت تخریب و تجاوز است. در بررسی قوانین و مقررات حاکم بر پارک ملی بمو، احکام حقوقی و قواعدی که الزامات و ضمانت اجراهای لازم برای حفاظت از این پارک ملی را فراهم کرده، دیده می شود ولی مسلماً با پیچیدگی روز افزون مسایل زیست محیطی در کشور و چالش ها و معضلات موجود در زمینه حفاظت از پارک های ملی، اشکالات حقوقی در پارک ملی بمو کاملاً مشهود است. نتایج بررسی نشان داد که به علت نقاط ضعف موجود در برخی از موارد ازجمله متناسب نبودن جرایم و مجازات ها عدم ضمانت اجرای کافی در جلوگیری از تجاوز و تخریب پارک ملی بمو و واگذاری آن ها به بخش های دولتی و در نهایت عدم هماهنگی بین دستگاه ها در این پارک ملی می بایست به بازنگری اصولی قوانین و ضمانت اجراهای آن پرداخت.
http://www.aejournal.ir/article_107615_d35358cb9f116c3464b9f5a8e80f6a60.pdf
2020-06-21
427
434
10.22034/aej.2020.107615
پارک ملی بمو
چالش های حقوقی
وضعیت زیست محیطی
تخریب و تجاوز
مهسا
هرندی
mahsa.harandi68@yahoo.com
1
گروه حقوق محیط زیست، دانشکده محیط زیست و انرژی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
تابش
2
گروه حقوق محیط زیست، دانشکده محیط زیست و انرژی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
داریوش
کریمی
dkaimi1@gmail.com
3
گروه حقوق محیط زیست، دانشکده محیط زیست و انرژی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
اسماعیلی، ر.،1381. بررسی ابعاد حقوقی آلودگی دریایی در چهارچوب حقوق بین المللی با نگرشی بر منطقه خلیج فارس. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه شیراز.
1
اباذری فومشی، م.، 1387. مجموعه قوانین و مقررات اراضی و زمین شهری، انتشارات خرسندی.
2
ابراهیم، م. و سوری، ع.، 1387. اقتصاد منابع طبیعی و محیط زیست، انتشارات نور علم.
3
بیابانی، غ.ح.، 1386. شیوه ها و شگردهای مجرمانه. جلد اول، انتشارات کارآگاه.
4
بررسی گزارش های به دست آمده از اصل کمیسیون 90 مجلس شورای اسلامی.
5
براتی، م.ع. و پرخیده، ا.، 1387. بازشناسی ماهیت اقتصاد پنهان در ایران، انتشارات موسسه تحقیقاتی تدبیر اقتصاد.
6
پورکمال، م.، 1377. شناخت کاداستر و کاربردهای آن، انتشارات مرکز اطلاعات جغرافیایی شهر تهران.
7
ترک زبان،ا.، 1381. بررسی جایگاه اصل اقدامات احتیاطی در حقوق بین المللی محیط زیست بیانگرشی بر حقوق ایران. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه شیراز.
8
حجت اشرفی، غ.، 1385. مجموعه کامل قوانین و مقررات و محشای جنگل ها، آب، کشاورزی، انتشارات گنج دانش.
9
خلیلیان، م.ج.، 1384. شاخص های توسعه اقتصاد از دیدگاه اسلام. انتشارات موسسه آموزشی پژوهشی امام خمینی (ره).
10
سوئل، ت.، 1382. اصول اساسی علم اقتصاد. ترجمه، وقار، م.ح.، انتشارات موسسه اطلاعات.
11
شاحیدر،ع.ک.،1372. شکار و صید در حقوق ایران. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه تهران.
12
دبیری،ف.،1389. بررسی برخی چالش های حقوقی مناطق چهارگانه تحت مدیریت سازمان محیط زیست استان گیلان. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران.
13
قاسمی، ن.، ۱۳۸۰. حقوق کیفری محیط زیست. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست.
14
قنبری، م.، 1388. تصرف غیرقانونی در وجوه اموال دولتی و عمومی. انتشارات نوآور.
15
عبادی،ر.،1387. بررسی وضعیت محیطی و حقوق مناطق حفاظت شده استان تهران و ارایه راهکار حقوقی. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران.
16
مجنونیان،ه.،1374.مباحثی پیرامون پارک ها، فضای سبز و تفرج گاه ها. انتشارات سازمان پارک ها و فضای سبز.
17
مجنونیان،ه.،1378. راهبردها و معاهدات جهانی حفاظت از محیط زیست. منابع زنده، جلد1 .
18
مجنونیان،ه.،1378. زیستگاه ها و حیات وحش. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست.
19
مجنونیان،ه.،1379. مناطق حفاظت شده ایران. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست.
20
منصور، ج.، 1378. مجموعه قوانین و مقررات جزایی. انتشارات دیدار.
21
Boardman, R., 1981. International organization and the conservation of nature. London: Macmillan. ISBN 0333262654.
22
Cioc, M., 2009. The Game of Conservation. International Treaties to Protect the World's Migratory Animals. Athens, OH: Ohio University Press. ISBN 978-0-8214-1867-3.
23
Convention Relative To The Preservation Of Fauna And Flora In Their Natural State. 1933, archived from the original on 2012-08-06, retrieved 2012-08-06.
24
Heijnsbergen, P.V., 1997. International legal protection of wild fauna and flora. Amsterdam; Washington, DC: IOS Press. ISBN 9051993137.
25
www. IUCN.unep-wcmc.org
26
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر عصاره مرزه (Satureja hortensis) بر محتوای چربی، پروفایل اسیدهای چرب و ویژگی های حسی سس ماهی مهیاوه
در تحقیق حاضر تأثیر عصاره مرزه بر تغییرات محتوای چربی، پروفایل اسیدهای چرب و ویژگی های حسی در سس تخمیری ماهی مهیاوه که یکی از محصولات سنتی در مناطق جنوبی ایران است، مورد ارزیابی قرار گرفت. مرزه (Satureja hortensis) گیاهی یک ساله از خانواده نعناییان است که عصاره آن دارای اثرات زیست فعالی هم چون اثر ضداکسیداسیون می باشد، ازاین رو به عنوان افزودنی برای بهبود کیفیت سس مهیاوه به این محصول سنتی افزوده شد. ارزیابی حسی و تعییرات شیمیایی سس در دو دوره 30 و 60 روزه حاوی غلظت های 0، 3، 5 و 8 درصد عصاره، انجام شد و نتایج حاصل با سس فاقد عصاره به عنوان گروه شاهد، مقایسه گردید. مقدار لیپید خام موجود در هر دو بخش مایع و جامد سس مهیاوه در 4 گروه مورد بررسی دارای اختلاف معنی دار می باشد (0/05>p). مقدار پراکسید حاصل در 4 گروه مورد بررسی دارای اختلاف معنی دار بود (0/05>p). بیش ترین مقدار TBARS در روز سی ام مربوط به تیمار شاهد و در روز شصتم مربوط به تیمار حاوی 3 درصد عصاره بود. تهیه سس مهیاوه از ماهی ساردین به همراه افزودن عصاره مرزه طی فرآیند تخمیر باعث کاهش میزان pH گردید. مقدار pH در سس مهیاوه تولیدی از ماهی (بدون عصاره) در روز صفر معادل 4/46 بود که این میزان در روز 30 و 60 کاهش یافت و هم چنین دارای اختلاف معنی داری نبود. با مقایسه فاکتورهای مورد بررسی در روز 30 و 60 نیز اختلاف معنی داری بین ویژگی های بو، طعم، ظاهر و قوام نمونه های دیده نشد (0/05<P).
http://www.aejournal.ir/article_107650_9f58533b5478ee3048cf60db5ec021a6.pdf
2020-06-21
435
444
10.22034/aej.2020.107650
سس تخمیری
سس مهیاوه
مرزه
فعالیت آنتی اکسیدان
ویژگی شیمیایی
ویژگی حسی
رضا
بائی
rezabaee7@gmail.com
1
گروه علوم و مهندسی صنایع غذایی، دانشکده علوم وفنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
نرگس
مورکی
nargess_mooraki@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم وفنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
ژاله
خوشخو
zhaleh_khoshkhoo@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده علوم وفنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
آبرومند، ع.؛ ضیایی نژاد، س. و باعثی، ف.، 1391. بررسی اثر تغذیه ای فیله های خام و سرخ شده ماهی شعری معمولی (Lethrinus nebulosus). بهره برداری و پرورش آبزیان. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. جلد 4، شماره 4، صفحات 1 تا 14.
1
امینی، ب.؛ کرامت، ج.؛ حجت الاسلامی. م.؛ جهادی، م. و محمودیان، ک.، 1392. ارزیابی اثرات آنتی اکسیدانی اسانس گیاه مرزه زراعی در روغن کلزا و روغن ماهی کیلکا. نشریه علوم غذایی و تغذیه. سال 12، شماره 47، صفحات 29 تا 38.
2
بقالیان، ک. و نقدی بادی، ح.ع.، ۱۳۷۹. گیاهان اسانس دار. چاپ اول، انتشارات اندرز. تهران.
3
شاهرخی، ن.، 1375. روش های کنترل کیفی مواد اولیه داروهای گیاهی. تهران، جهاد دانشگاهی شهید بهشتی.
4
ﺷﮑﯿﺐ، ع. و ﻣﻮﺳﻮی نسب، م.، 1392. ﺗﻮﻟﯿﺪ ﺳﺲ ماهی ساردین رنگین کمان ﺧﺸﮏ شده و ﺑﺮرﺳﯽ ﺧﻮاص ﺷﯿﻤﯿﺎﺋﯽ آن. ﻣﺠﻠﻪ ﻋﻠﻤﯽ ﺷﯿﻼت اﯾﺮان. ﺳﺎل 22، ﺷﻤﺎره 1، صفحات 49 تا 60.
5
مرادی زاده فرد،ح.؛ جلالیان، م. و شعبانپور، ب.، 1390. تاثیر عصاره سیر بر خواص شیمیایی، میکروبی و حسی مهیاوه تولیدی از ماهی آنچوی تازه و خشک. فصلنامه علوم و صنایع غذایی. دوره 8 ، شماره 30، صفحات 11 تا 20.
6
میرجلیلی. م.ح.، 1382. جایگاه اقتصادی گیاهان اسانس دار در جهان. مجله زیتون. شماره 156، صفحات 24 تا 36.
7
محمدی، م.؛ قربانی، م.؛ بیگ بابائی، ع.؛ یگانه زاد، س. و صادقی ماهونک، ع.ر.، 1398. بررسی اثر تلقیح ترکیبات استخراجی توسط آب مادون بحرانی از پوست پسته جهت افزایش پایداری روغن سویا. مجله علوم تغذیه و صنایع غذایی ایران. جلد 14، شماره 1، صفحات 36 تا 46.
8
Anggo, D.; Swastawati, F. and Rianingsih, L., 2015. Changes of Amino and Fatty Acids in Anchovy (Stolephorus sp.) fermented fish paste with different fermentation periods. Procedia Environmental Sciences. Vol. 23, pp: 58-63.
9
Baser, K.H.C.; Tumen, G.; Tabanca, N. and Demirci, F., 2001. Composition and antibacterial activity of the essential oils from Satureja wiedemanniana (Lallem.) Velen. Zeitschrift- fur- Naturforschung –Section -C- Biosciences. Vol. 56, pp: 731-738.
10
Ben-gigirey, B.; De Sousa, J.M.; Villa, T.G. and Barros velazqez, J., 1999. Chemical changes and visual appearance of albacore tuna as related to frozen storage. J. Food Sci. Vol. 64, pp: 20-24.
11
Cansu Feyzioglu, G. and Tornuk, F., 2016. Development of chitosan nanoparticles loaded with summer savory (Satureja hortensis L.) essential oil for antimicrobial and antioxidant delivery applications. LWT - Food Science and Technology. Vol. 70, pp: 104-110.
12
Egan, H.; Kirk, R.S. and Sawyer, R., 1997. Pearsons chemical analysis of foods (9th ed.). pp: 609-634.
13
Eun, J.B.; Boyle, J.A. and Hearnsberger, J.O., 1994. Lipid peroxidant and chemical change in Catfish (Ictalurus punctatus) muscle microsoes during frozen storage. J. Food Sci. Vol. 59, pp: 251-255.
14
Hajumdar, R.K. and Basu, S., 2010. Characterization of the traditional fermented fish product Lonailish of Northeast India. Journal of traditional Knowledge. Vol. 3, pp: 453-458.
15
Kakati, B. and Goswami, U.C., 2013. Quality evaluation of the traditional fermented fish product shidol of Northeast India prepared from Puntis Sophore and setipinna phasa Indian Journal of traditional Knowledge. Vol. 12, No. 1, pp: 85-90.
16
Kilinc, B.; Cakli, S.; Tolasa, S. and Dincer, T., 2006. chemical, Microbiological and sensory changes associated with fish sauce processing. European Food Research and Technology.
17
Koral, S.; Kose, S. and Tufan, B., 2009. Investigating the Quality Changes of Raw and Hot Smoked Garfish (Belone belone euxini, Günther, 1866) at Ambient and Refrigerated Temperatures. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 9, pp: 53-58.
18
López-Cobo, A.; Gómez-Caravaca, A.M.; Švarc-Gajić, J.; Segura-Carretero, A. and Fernández-Gutiérrez, A., 2015. Determination of phenolic compounds and antioxidant activity of a Mediterranean plant: The case of Satureja montana subsp. Kitaibelii. Journal of Functional Foods. Vol. 18, pp: 1167-1178.
19
Mirjana, S.; Nada, B. and Valerija, D., 2005. Phytochemical composition and antimicrobial activities of the essential oils from Satureja subspicata Vis. grown in Croatia. Food Chemistry. pp: 1-9.
20
Nayak, J.; Nair, P.J.V.; Ammu, K. and Mathew, S., 2003. Lipase activity in different tissues of four species of fish: rohu (Labeo rohita Hamilton), oil sardine (Sardinella longiceps Linnaeus), mullet (Liza subviridis Valenciennes) and Indian mackerel (Rastrelliger kanagurta Cuvier). J. Sci Food and Agric. Vol. 83, pp: 1139-1142.
21
Rezaei, M.; Hosseini, S.F.; Langrudi, H.E.; Safari, R. and Hosseini, S.V., 2008. Effect of delayed icing on quality changes of iced rainbow trout (Onchorynchus mykiss). Food Chemistry. Vol. 106, pp: 1161-1165.
22
Samadi, N.; Masoum, S.; Mehrara, B. and Hosseini, H., 2015. Application of linear multivariate calibration techniques to identify the peaks responsible for the antioxidant activity of Satureja hortensisL. and Oliveria decumbens Vent. essential oils by gas chromatography–mass spectrometry. Journal of Chromatography B. Vol. 1001, pp: 75-81.
23
Shaddel, R.; Maskooki, A.; Haddad-Khodaparast, M.H.; Azadmard-Damirchi, S.; Mohamadi, M. and Fathi Achachlouei, B., 2014. Optimization of Extraction Process of Bioactive Compounds from Bene Hull Using Subcritical Water. Food Science and Biotechnology. Vol. 23, No. 5, pp: 1459-1468.
24
Shojaee-Aliabadi, S.; Hosseini, H.; Mohammadifarm, M.A.; Mohammadi, A.; Ghasemlou, M.; Ojagh, S.M.; Hosseini, S.M. and Khaksar, R., 2013. Characterization of antioxidant-antimicrobial k-carrageenan films containing Satureja hortensis essential oil. International Journal of Biological Macromolecules. Vol. 52, pp: 116-124.
25
Parvaneh, V., 2005. Quality control and chemical analyses of food: edible oils and fats. Tehran: Tehran University Pub. (In Persian).
26
Perrucci, S.; Cecchini, S.; Pretti, C.; Cognetti, A.M.V.; Macchioni, G.; Flamini, G. and Cioni, P., 1995. In vitro antimycotic activity of some natural products against Saproloegnia ferax. Phytotherapy Research. Vol. 9, pp:147-149.
27
Suvanich, V.; Jahncke, M.L. and Marshall, D.L., 2000. Changes selected chemical quality characteristics of channel catfish frame mince during chill and frozen storage. Journal of Food Science. Vol. 65, pp: 24-29.
28
Visessanguan, W.; Benjakul, S. and Riebroy, S., 2006. Changes in lipid composition and fatty acid profile of Nham, aThai fermented pork Sausage, during fermentation. Journal food chemistry. Vol. 94, No. 4, pp: 580-583.
29
Zarei, M.; Najafzadeh, H.; Eskandari, M.H.; Pashmforoush, M.; Enayati, A.; Ggharibi, D. andAlfazlara, M., 2012. Chemical and microbial properties of mahyaveh, a traditional Iranian fish sauce. Food control. Vol. 23. pp: 511-514.
30