ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی و تدوین برنامه مدیریت راهبردی کاهش تعارضات خرس قهوه ای (Ursus arctos) در استان قزوین
در سال های اخیر، تداخل نیازهای طبیعی حیات وحش مانند تامین آب، غذا، پناه و مکان تولیدمثل و نیازهای انسان در اراضی طبیعی، منجر به بروز تعارضاتی جدی میان انسان و حیات وحش شده است.افزایش حوادث ناشی از خسارات وارد شده به انسان، دام و باغات توسط خرس در استان قزوین یکی از نمونه های بارز این تعارض به شمار می آید. برای رفع این تعارضات تدوین و اجرای برخی استراتژی های سازگار با شرایط اقتصادی- اجتماعی مناطق می تواند راه حل موثری برای کاهش تعارضات در این مناطق تلقی شود. در این پژوهش نقاط قوت و ضعف موجود در استان و نیز فرصت ها و تهدیداتی که گونه با آن ها مواجه است و یا در آینده با آن ها مواجه خواهد شد، شناسایی و برای تدوین یک استراتژی مدیریتی کارآمد به کار گرفته شد. سپس از طریق دسته بندی، وزن دهی و تجزیه و تحلیل عوامل ضعف و قوت و نیز فرصت و تهدید موجود، با استفاده ازماتریس SWOT، استراتژی های مناسب تدوین شد. در نهایت با استفاده از ماتریس برنامه ریزی استراتژیک کمی (QSPM) و با توجه به نتایج به دست آمده، سه راهبرد اجرای کامل برنامه عمل حفاظت از خرس قهوه ای با جذب اعتبارات لازم توسط اداره کل حفاظت محیط زیست استان، آموزش جوامع محلی و ترویج روش های موثر در حفاظت از کندوها و باغات در برابر حملات خرس، افزایش تعداد محیط بانان و تجهیز پاسگاه ها به منظور حفاظت بهتر از زیستگاه های خرس و حضور مستمر محیط بانان در نواحی داغ به عنوان مهم ترین استراتژی ها در جهت تهیه برنامه مدیریت راهبردی کاهش تعارضات خرس قهوه ای در استان قزوین هستند.
http://www.aejournal.ir/article_109544_0a730e9175f3acd12192222e8ab01262.pdf
2020-09-22
1
10
10.22034/aej.2020.109544
تعارض
برنامه مدیریت استراتژیک
خرس قهوه ای
استان قزوین
روش SWOT
ماتریس QSPM
سیاوش
رضازاده
rezazadeh_msr@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
AUTHOR
میرمهرداد
میرسنجری
mehrdadmirsanjari@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
LEAD_AUTHOR
احمدی، م.؛ کابلی، م.؛ ایمانی هرسینی، ج.؛ خسروی شریف آبادی، ر. و الماسی، م.، 1391. تدوین برنامه مدیریت استراتژیک جمعیت های گرگ در استان همدان با رویکرد کاهش تعارضات انسان و گرگ در همدان. نشریه محیط زیست طبیعی، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 65، شماره 3، صفحات 271 تا 281.
1
اداره کل محیط زیست استان قزوین.1397 . گزارشات داخلی بررسی خسارت های حیات وحش (منتشر نشده).
2
اداره کل محیط زیست استان قزوین.1398 . گزارش اجرای برنامه عمل خرس قهوه ای در استان قزوین در سال 1397 (منتشر نشده).
3
بهداروند، ن.؛ کابلی، م.؛ جباریان امیری، ب.؛ ابراهیم پور ،ر.؛ اسدی آق بلاغی، ر.م. و ایمانی هرسینی، ج.، 1393 . شناسایی مناطق پرخطر و عوامل محیطی مؤثر بر حملات گرگ به دام در استان همدان با به کارگیری روش مدل سازی MAXENT. نشریۀ محیط زیست طبیعی دانشگاه تهران. دوره 67، شماره 3، صفحات 245 تا 252.
4
زمانی، ن. و تراهی، ر.، 1396. تاثیر آموزش محیط زیست بر کاهش تعارض انسان و حیات وحش (مطالعه موردی: منطقه حفاظت شده خائیز). فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 4، صفحات 29 تا 40.
5
عبداللهی، ش.؛ محمدی، ح. و نصرتی، س. م.، 1391. بررسی وضعیت خسارات وارده از ناحیه حیات وحش در ایران. فصلنامه علمی محیط زیست، سازمان حفاظت محیط زیست. شماره 52، صفحات 1 تا 7.
6
فرهادی نیا، م.ص؛ محمدی مقانکی،ا.و اکرامی، ب.، 1398. راهنمای مدیریت تعارض انسان و گوشت خواران بزرگ در ایران. انتشارات فانوس اندیشه، قم. 324 صفحه.
7
Amaja, L.G.; Hunde Feyssa, D. and Mekonnen Gutema, T., 2016. Assessment of types of damage and causes of human-wildlife conflict in Gera district, south western Ethiopia. Vol. 8, No. 5, pp: 49-54.
8
Damerell, P.; Howe, C. and Milner-Gulland, E.J., 2013. Child-orientated environmental education influences adult knowledge and household behaviour. Environmental Research Letters. Vol. 8, No. 1, pp:105-106.
9
Rakshya, T., 2016. Living with wildlife: Conflict or co-existence Acta Ecologica Sinica. Vol. 36, No. 6, pp: 509-514.
10
Breitenmoser, U.; Angst, C.; Landry, J.M.; Breitenmoser-Wursten, C.; Linnell, J.D.C. and Weber, J.M., 2005.Non-lethal techniques for reducing depredation. Cambridge, UK, Cambridge University Press.
11
Chardonnet, P.; Soto, B.; Fritz, H.; Crosmary, W.; Drouet-Hoguet, N.; Mesochina, P.; Pellerin, M.; Mallon, D.; Bakker, L.; Boulet, H. and Lamarque, F., 2010. Managing the conflicts between people and lion: review and insights from the literature and field experience. Working Paper, FAO. 69 p.
12
Conover, M.R., 2008. Why are so many people attacked by predators? Human-Wildlife Conflicts. Vol. 2, pp: 139-140.
13
Cotton, W., 2008. Resolving conflicts between humans and the threatened Louisiana black bear. Human-Wildlife Conflicts. Vol. 2, pp: 151-152.
14
David, F.R., 2007. Strategic Management Concepts and Cases, (11th ed.), Prentice Hall, New York.
15
Diamantopoulou, P. and Voudouris, K., 2008. Optimization of water resources management using SWOT analysis: the case of Zakynthos Island, Ionian Sea, Greece. Environmental Geology. Vol. 54, pp: 197-211.
16
Distefano, E., 2005. World Conservation Union on Human-wildlife conflict, Human-Wildlife Conflict world wide: collection of case studies, analysis of management strategies and good practices. FAO, Rome.
17
Halfpenny, J.C.; Sanders, M.R. and McGrath, K.A., 1991. Human-lion interactions in Boulder County, Colorado: past, present, and future. Proceedings of the Mountain Lion-human Interaction Workshop and Symposium, April 24-26. Denver, Colorado, USA.
18
Houben, G.; Lenie, K. and Vanhoof, K., 1999. A knowledge-based SWOT-analysis system as an instrument for strategic planning in small and medium sized interprises. Decision Support Systems 26 p.
19
IUCN. 2004. Preventing and Mitigating Human-Wildlife Conflicts: World Parks Congress Recommendation. Human Dimensions of Wildlife. Vol. 9, No. 4, pp: 259-260.
20
Jamtsho, Y. and Wangchuk, S., 2016. Assessing patterns of human–Asiatic black bear interaction in and around Wangchuck Centennial National Park, Bhutan. Global Ecology and Conservation. Vol. 8, pp: 183-189.
21
Madden, F., 2004. Creating coexistence between humans and wildlife: global perspectives on local efforts to address human–wildlife confl ict. Human Dimensions of Wildlife. Vol. 9, pp: 247-257.
22
Madison, J.S., 2008. Yosemite national park: the continuous evolution of human-black bear conflict management. Human-Wildlife Conflicts. Vol. 2, pp: 153-167.
23
Nahman, A. and Godfrey, L., 2010. Economic instruments for solid waste management in South Africa: opportunities and constraints’, Resources, Conservation and Recycling, Vol. 54, pp: 521-531.
24
Nikolaou, I.E. and Evangelinos, K.I., 2010. A SWOT analysis of environmental management practices in Greek Mining and Mineral Industry. Resources Policy. Vol. 35, pp: 226-234.
25
Ogada, M.O.; Woodroffe, R.; Oguge, N. and Frank, L., 2003. Limiting Depredation by African Carnivores: The Role of Livestock Husbandry. Conservation Biology. Vol. 17, pp: 1521-1530.
26
Oulare, A., 2008. Status, Trends and Threats for Lion Populations in the Republic of Guinea. Proceedings of international seminar on conservation of large carnivores in west and central Africa, CML/CEDC, November 2006. Maroua, Cameroon.
27
Radder, L. and Louw, L., 1998. The SPACE Matrix: A Tool for calibrating competition. Long Range Planning. Vol. 31, pp: 549-559.
28
Rezazadeh, S.; Jahani, A.; Makhdoum, M. and Meigooni, H.G., 2017. Evaluation of the Strategic Factors of the Management of Protected Areas Using SWOT Analysis-Case Study: Bashgol Protected Area-Qazvin Province.Open Journal of Ecology. Vol. 7, No. 1, pp: 55-68.
29
Wolfe, M.L., 2008. Avoiding the blame game in managing problem black bears. Human-Wildlife Conflicts. Vol. 1, pp: 12-14.
30
Ziegltrum, G., 2008. Impacts of the black bear supplemental feeding program on ecology in western Washington. Human-Wildlife Conflicts. Vol. 2, pp: 153-159.
31
ORIGINAL_ARTICLE
برآورد انرژی قابل متابولیسم نگه داری و نیاز روزانه نشخوارکنندگان کوچک وحشی چرا کننده در پارک ملی لار
اطلاع از نیاز مواد مغذی روزانه دام های چرا کننده در مراتع مناطق مختلف آب و هوایی، به منظور محاسبه ظرفیت چرا در طرح های مرتعداری، ضروری است. در همین راستا، نیاز انرژی قابل متابولیسم روزانه در سطح نگه داری برای نشخوارکنندگان کوچک وحشی چرا کننده در مراتع پارک ملی لار بررسی شد. برای این منظور با توجه به میانگین مقادیر شاخص های کیفیت علوفه گونه های مرتعی و سهم آن ها در ترکیب گیاهی مرتع، مقدار انرژی قابل متابولیسم در کیلوگرم علوفه خشک مراتع مورد چرا برآورد شد و با مد نظر قرار دادن نیاز انرژی قابل متابولیسم روزانه نشخوارکنندگان کوچک وحشی، مقدار علوفه تأمین کننده نیاز روزانه دام برای محاسبه ظرفیت چرای جداگانه این حیوانات در مراتع منطقه برآورد گردید. با استفاده از وزن واحد دامی نشخوارکنندگان کوچک وحشی، میزان انرژی قابل متابولیسم نگه داری مورد نیاز روزانه دام های چرا کننده با دو روش معادله MAFF و جدول NRC در مراتع مورد مطالعه تعیین شد. گونه های علوفه مورد چرای دام ها در مرحله گل دهی در مراتع مورد مطالعه شناسایی و جمع آوری شد و میانگین درصد CP، ADF، DMD و میزان ME (مگاژول) آن ها در هر کیلوگرم علوفه خشک مراتع به ترتیب برابر با 0/17±12/42، 0/28±37/59، 0/28±57/81 و 0/07±7/89 مگاژول تعیین شد. هم چنین میزان انرژی قابل متابولیسم روزانه برای این دام ها نظیر: بز نر، بز ماده، قوچ و میش به ترتیب برابر با 1/25±16/32، 1/36±14/07، 1/37±13/67 و 1/21±11/58 مگاژول در روز و نیاز روزانه آن ها براساس ماده خشک مصرفی به ترتیب برابر با 0/25±2/06، 0/12±1/78، 0/17±1/71 و 0/25±1/46 کیلوگرم برآورد گردید. با استفاده از نتایج این مطالعه می توان ظرفیت جدید و جداگانه چرا را برای نشخوار کنندگان وحشی در مناطق مورد مطالعه تعیین کرد.هم چنین نتایج نشان داد به دلیل هزینه بر بودن تعیین کیفیت علوفه، میتوان از نتایج مذکور به منظور برآورد نیاز روزانه این دام ها در سال های مختلف استفاده کرد.
http://www.aejournal.ir/article_109976_d47565708b757d99d6c540f569fb4231.pdf
2020-09-22
11
20
10.22034/aej.2020.109976
پارک ملی لار
نشخوارکنندگان کوچک وحشی
نیاز روزانه
هادی
منصوری خواه
mansuri.hadi@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد
چمنی
m.chamani@srbiau.ac.ir
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
ناصر
کریمی
karimi.naser@yahoo.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
قباد
عسگری جعفر آبادی
ghobad@gmail.com
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
کاظم
کریمی
karimikazem@gmail.com
5
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
ارزانی، ح.؛ معتمدی ترکان، ج.؛ نیکخواه، ع.؛ آذرنیوند، ح. و قربانی، م.، 1389. معادل واحد دامی و انرژی مورد نیاز گوسفند قره گل. نشریه مرتع و آبخیزداری، مجله منابح طبیعی ایران. دوره 63، شماره 4، صفحات 425 تا 438.
1
بابایی، ح.ر.؛ منصوری، م.ر.؛ آریایی، م.ر.؛ خلیلی، ش. و منصوری، ح.، 1393. طرح تفصیلی اجرایی آبخیزداری منطقه الرم (حوزه آبریز سد لار). مدیریت آبخیزداری سازمان جهاد سازندگی استان تهران. جلد دوم، سنتز و پیشنهادات اجرایی. 285 صفحه.
2
Alison. C.O., 1985. Factors affecting forage intake by range ruminants: Are view, Journal of Range management. Vol. 38, No. 4, pp: 305-311.
3
AOAC. 2000. AOAC: Official Methods of Analysis. 17th ed., 54, Association of Official Analytical Chemists (Animal Feed, chapter 4): Arlington: AOAC International.
4
Arzani, H.; Beiniaz, M. and Alizadeh, E., 2017. Model of extensive cattle grazing for sustainable use in rangelands. OIDA Int J Sustain Develop. Vol. 10, No. 7, pp: 11-14.
5
Arzani, H.; Eftekhari, A.; Bihamta, M.; Esfahan, E. and Mozaffarian, V., 2014. Investigation on effects of range management plants, property size and number of land unit owners on rangelands (case study: Saveh Rangelands). JBES. Vol. 4, No. 1, pp: 81-89.
6
Arzani, H.; Sanaee, A.; Barker, AV.; Ghafari, S. and Motamedi, J., 2015. Estimating nitrogen and acid detergent fiber contents of grass species using near infrared reflectance spectroscopy (NIRS). J Rangeland Sci. Vol. 5, No. 4, pp: 260-268.
7
Arzani, H.; Mohammadi, H. and Keshtkar, H., 2017. Estimation of plant production for sustainable use of arid and semi-arid rangeland ecosystems using satellite data. OIDA Int J Sustain Develop. Vol. 10, No. 6, pp: 11-16.
8
Arzani, H.; Motamedi, J. and Zare Chahoki, M.A., 2010. Report of national project Forage quality of range species in Iran. Organization of Forests, Rangelands and Watershed Management of Iran. 230 p.
9
Arzani, H., 2009 a. Forage quality and daily requirement of grazing animal. University of Tehran peess. 354 p.
10
Arzani, H.; Torkan, J. and Kaboli, H., 2005. Factors affecting forage quality of native species in iranian range. lands proceedings of XX International Grass Land Congress, Ire land. 291 p.
11
Arzani, H.; Sadeghimanesh, M.R.; Azarnivand, H.; Asadian, G. and Mokhtari Asl, A., 2007 a. Determination of animal unit equivalent (AUE) and daily requirement energy for Sanjabi sheep breed, 4th ed. Iranian publication. Tehran, Iran. pp: 339-447.
12
Arzani, H. and Naseri, K.L., 2009 b. Livestock Feeding on Pasture (Translated). 2th ed., University of Tehran press. 299 p.
13
Arzani, H.; Nikkhah, A.; Azarnivan, H.; Jafarian, Z. and Ghorbani, M., 2008 a. Determination of animal unit and daily animal unit requirement of Sanghsary sheep breed. Iranian Journal Natural Resources. Vol. 187, No. 1, pp: 61201.
14
Arzani, H.; Ghorbani, M.; Azarnivan, H. and Shariari, E., 2008 b. Determination of animal unit weight and daily energy requirement of Moghani sheep breed. Iranian Journal Natural Resources. Vol. 61, No. 2, pp: 474-465.
15
Arzani, H.; Mosayebi, M. and Nikkhah, A., 2008 c. Determination of animal unit size and animal unit requirement of Fashandy sheep breed grazing on rangeland (Case study: Taleghan). Iranian J. Sci. & Technol. Agric. & Natur. Resour. Vol. 46, No. 12A, pp: 361-349.
16
Arzani, H.; Nikkhah, A. and Azarnivand, A., 2007 b. Report of national project Determination of animal unit weight and animal requirement in rangelands of Iran. 132 p.
17
Arzani, H.; Basiri, M.; Khatibi. F. and Ghorbani, G., 2006 a. Nutritive value of some Zagros mountain rangeland species. Small Ruminant Research. Vol. 65, pp: 128-135.
18
Arzani. H.; Mahdavi, S. Kh.; Nikkhah, A. and Azarnivand, H., 2006 b. Determination of Animal Unit weight and Animal Unit Requirement of Dalagh breed (Case study: Agh Ghala Region). Iranian J. Range and Desert Research. Vol. 13, No. 3, pp: 248-236.
19
Atrian, P., 2009. Sheep Nutrition. 1th ed., Aeej press. 348 p.
20
Frasure, J.R., 1979. The Effect of Three Grazing Management Systems on Cattle Diets on the Welder Wildlife Refuge. M.S. Thesis. Texas Tech Univ., Lubboke. Tex.
21
Freer, M., 1981. The control of food in take by grazing animals in: F.H.W Morally (Ed) Grazing Animals. Elsevier, Amsterdam. pp: 105-120.
22
Corbett, J.L., 1987. Energy and protein utilization by grazing animals, in: Wheeler, J.L.; Pearson, C.J. and Roberts, G.E., (eds.), Temperate pastures, their production, use and management (Australian Wool Corporation, Collingswood. Vic.). pp: 415-422.
23
Garza, A. and Fulbright, T., 1988. Comparative chemical composition of armed salt bush and four wing saltbush. Journal of Range Management. pp: 401-403.
24
Ginti, K.G. and Ratry, P.V., 1987. Live stock feeding on pasture New Zealand society of animal production. Occasional Publication. No. 10.
25
Graham, N.M., 2001. Energy needs of grazing ruminant livestock. Nutrient Society. Vol. 8, pp: 64-71.
26
Havstad, K.M. and Malechek., J., 1982. Energy expenditure by Heifers Grazing Crested Wheat grass of Diminishing Availability. J. of Range mgt. Vol. 35, No. 4, pp: 447-450.
27
Holechek, J.L.; Pieper, R.D. and Herbel, C.H., 2004. Range management (principles and practices). (5nd ed.), Prentice Hall, Englewood Cliff. 587 p.
28
Khalil, J.K.; Saxay, S. and Heydar. Z., 1986. Nutrient composition Atriplex leave growing in Saudi Arabia. Journal of Range Management. Vol. 30, pp: 2014-2017.
29
Kjeldahl, J., 1883. A new method for the estimation of nitrogen in organic compounds. Zeitschrift für Analytische Chemi. Vol. 22, pp: 366-382.
30
Li, X.; Kellaway, R.C.; Ison, R.L. and Annision, G., 1992. Chemical Smposition and Nutritive value of Mature Annual Legumes for sheep. Anim. Feed Sci. Technol. Vol. 37, pp: 221-223.
31
MAFF. 1984. Energy allowances and feeding system for ruminants. ADAS Reference Book 433. HNSO, London.
32
Minson, D.L., 1987. Forage in ruminant nutrition, Academic preees. Inc, Santiago. California.
33
National Research Council (NRC). 2007. Nutrient requirement of domestic animal. Number 6th Ed.Nat. Acad. Sci., Washington, D.C.
34
Nikkhah, A. and Amanloo, H., 2015 Principles of livestock nutrition and feeding (Translated). University of Zanjan Press. 935 p.
35
Sanjari, G.R., 1997. Investigation on Sistani Nomads Rangelands in order to Achieve Sustaiable Equilibrium between Animal and Range. M.S. Thesis, University of Tehran. 145 p.
36
Scarnechia, D.L. and Gaskins, C.T., 1987. Developing animal unit equivalents for beef cattle, Society for Range Management, Abstracts. Vol. 40, 218 p.
37
Standard Committee on Agriculture. 1990. Feeding Standards for Australian Livestock Ruminants, CSIRO, Australia.
38
Oddy, V.U. and Roberds, B.D.S.H., 1983. Prediction of In-vivo dry matter digestibility from the fiber and nitrogen content of a feed, In Feed Information and Animal production, Packham, Common wealth Agricultural Bureux. Australia. pp: 295-298.
39
Vallentine, J.F., 2001. Grazing management. 2th Ed, Academic Press, New York. 657 p.
40
Van Soest, P.J.; Roberson, J.B. and Lewis, B.A., 1991. Methods for dietary fiber, neutral detergent fiber and nonstarch polysaccharides in relation to animal nutrition. J Dairy Sci. Vol. 74, pp: 3583-3597.
41
Voisin, A. 1959., Grass productivity. Philosophical Library, New York. pp: 338-349.
42
Rhodes, B.D.S.H. and Sharrow, S.H., 1990. Effect of grazing by sheep on the quantity and quality of forage available to big game in Oregon coast range. Journal of range management. Vol. 43, No. 3, pp: 235-237.
43
Richardson, F.D., 2004. Simulation models of rangelands production systems (simple and complex), Ph.D. Thesis in Applied Mathematices, University of Cape Town, South Africa. 320 p.
44
Stoddart, L.A.; Smith, A.D. and Box, T.W., 1975. Range Management, 3th edi, MCG raw Hill Book Company, USA.
45
Yong, B.A. and Corbett, J.L., 1972. Maintenance energy requirement of grazing sheep in relation to herbage availability, Icaloria metric estimates. Australian Journal of Agricultural Res. Vol. 23.
46
Zohdi, M.; Arzani, H.; Javadi, S.A.; Jalılı, A. and Khorshidi, G., 2018. Government and range management in Iran (policy, lows and plans). Appl Ecol Environ Res. Vol. 16, No. 4, pp: 4637-4654.
47
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین ارزش غذایی، تولید گاز و تجزیهپذیری گیاهان شورزیست سالیکورنیا (Salicornia europaea)، کاکل (Suaeda aegyptiaca) و گتک (Halocnemum strobilaceum) در گوسفند
ارزش غذایی گیاهان شورزیست سالیکورنیا (europaeaSalicornia)، گتک (Halocnemum strobilaceum) و کاکل یا سیاه شور مصری (aegyptiacaSuaeda) با تعیین ترکیب شیمیایی، تولید گاز به روش آزمایشگاهی و تجزیه پذیری شکمبه ای با استفاده از 3 راس گوسفند نر فیستولاگذاری شده ارزیابی شد. نتایج آزمایش نشان داد که میزان پروتئین گتک، کاکل و سالیکورنیا به ترتیب 12/8، 9/55 و 5/88 درصد، بود. بالاترین میزان الیاف نامحلول در شوینده خنثی و الیاف نامحلول در شوینده اسیدی در کاکل (40/1 درصد و 27/6 درصد) مشاهده شد. سالیکورنیا بالاترین میزان سدیم (4/67 درصد) را داشت. مقدار بیش تری سرب درگتک (4/42 میلی گرم در کیلوگرم) در مقایسه با سالیکورنیا و کاکل مشاهده شد. میزان کادمیوم گتک (2/53 میلی گرم بر کیلوگرم) بیش تر از کاکل و سالیکورنیا بود. مقدار تانن در سالیکورنیا (0/64 درصد) بیش از گتک (0/27 درصد) و کاکل (0/12 درصد) بود. گیاه کاکل نسبت به گتک و سالیکورنیا تولید گاز تجمعی بالاتری داشت. میزان اسیدهای چرب کوتاه زنجیر در بین گیاهان مورد مطالعه از 0/32 تا 0/45 میلی مول بود که کم ترین مقدار مربوط به گتک و بیش ترین مقدار مربوط به کاکل بود (0/0001>P). بخش سریع تجزیه ماده خشک در گیاه سالیکورنیا بیش ترین (38/2 درصد) و در کاکل کم ترین (26/8 درصد) مقدار را داشت (0/0001>P). بخش کند تجزیه ماده خشک در گیاه کاکل (22/5 درصد) بیش تر از سالیکورنیا (15/1 درصد) و گتک (13/9 درصد) بود (0/001>P). کم ترین میزان تجزیه پذیری پروتئین مربوط به گتک بود (0/05>P). در کل نتایج آزمایش نشان داد که این گیاهان می توانند به عنوان منابع خوراکی برای نشخوارکنندگان در مناطق با اراضی شور و سواحل دریا مورد استفاده قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_110147_95c9a9f318afaa72d60b5704e2e0ef01.pdf
2020-09-22
21
32
10.22034/aej.2020.110147
ارزش غذایی
تولید گاز
سالیکورنیا
کاکل
گتک
گیاهان شورزیست
محمد هادی
صادقی
mhsadeghi46@gmail.com
1
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشارزی و منابع طبیعی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
محسن
ساری
mohsensare@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و صنایع غذایی، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، ملاثانی، ایران
AUTHOR
طاهره
محمدآبادی
t.mohammadabadi@gmail.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی و صنایع غذایی، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی خوزستان، ملاثانی، ایران
AUTHOR
مرتضی
رضایی
4
بخش تغذیه، موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
AUTHOR
ابرغانی، ا.؛ چاجی، م.؛ منصوری، ه.؛ مموئی، م.؛ میرزاده، خ. و روشن فکر، ه.، 1394. ارزیابی ترکیب شیمیایی، انرژی قابل متابولیسم و گوارش پذیری سه گیاه شورپسند مورد تعلیف شتر به روش آزمایشگاهی. نشریه پژوهش و سازندگی. سال 28، شماره1، صفحات 29 تا 42.
1
اسدی، م.، 1380. فلور ایران . تیره اسفناج . جلد 38. انتشارات موسسه تحقیقات جنگل ها و مراتع.
2
باشتینی، ج. و توکلی، ح.، 1381. تعیین ارزش غذایی پنج گونه غالب از گیاهان شورپسند مناطق کویری استان خراسان. نشریه پژوهش و سازندگی. سال 15، شماره 2، صفحات 2 تا 5.
3
ترابیان، ع. و مهجوری، م.، 1381. بررسی اثر آبیاری با فاضلاب روی جذب فلزات سنگین بوسیله سبزیهای برگی جنوب تهران. نشریه علوم خاک و آب. سال 16، شماره 2، صفحات 189 تا 196.
4
حسینی نژاد، ز.؛ یوسف الهی، م. و فضائلی، ح.، 1391. ارزش غذایی پنج گونه گیاهان شورپسند در منطقه سیستان. نشریه علوم دامی ایران. سال 43، شماره 3، صفحات 1 تا 10.
5
خورسندی، ف.؛ وزیری، ژ. و عزیزی زهان، ع.ا.، 1389. شوروزی: استفاده پایدار از منابع آب و خاک شور در کشاورزی. انتشارات کمیته ملی آبیاری و زهکشی ایران. 320 صفحه.
6
دانش مسگران، م. و حیدریان، ن.، 1379. تعیین بخشهای مختلف نیتروژن دار مواد خوراکی مورد استفاده نشخوارکنندگان در استان خراسان. نشریه علوم و صنایع کشاورزی. سال 14، شماره 2، صفحات 79 تا 93.
7
رزاقی، ع.؛ ولی زاده، ر. و ترحمی، م.، 1394. ترکیب شیمیایی، تجزیه پذیری و تولید گاز گیاهان شورزیست سلمکی سفید (Aeluropus littoralis) و چمن شور (Salsola rigida) علف شور ،(Atriplex canesences). نشریه پژوهش های علوم دامی ایران. سال 7، شماره 1، صفحات 1 تا 11.
8
رنجبر، غ.ح.؛ پیرسته انوشه، ه. و بناکار، م.ح.، 1395. مروری بر پژوهش های انجام شده بر روی هالوف یتها در ایران. دومین کنگره بین المللی و چهاردهمین کنگره ملی علوم زراعت و اصلاح نباتات ایران. رشت. 9 تا 11 شهریور ماه.
9
ریاسی، ا.؛ دانش مسگران، م.؛ نصیری مقدم، ح. و ضمیری، م.ج.، 1384. تعیین ترکیب شیمیایی، ضرایب تجزیه پذیری، نسبت ناپدید شدن شکمبه ای- روده ای و مدل های هضمی ماده خشک و پروتئین خام چهار گونه گیاهان شورزیست (کوشیا، آتریپلکس، سیاه شور و دانارک). نشریه علوم و صنایع کشاورزی. سال 19، شماره 1، صفحات 98 تا 110.
10
شریفی راد، م.؛ حشمتی، غ. و باقریه نجار، م. ب.، 1395. بررسی اثر شدت های برداشت مختلف و مراحل فنولوژیکی بر تغییرات ذخایر کربوهیدرات های محلول در دو گونه Halocnemum strobilaceum و Halostachys caspica (مطالعه موردی: مراتع شهرستان گمیشان واقع در شمال غرب استان گلستان). نشریه فیزیولوژی محیطی گیاهی. سال 11، شماره 41، صفحات 48 تا 77.
11
کافی، م.؛ صالحی، م. و عشقی زاده، ح.ر.، 1389. کشاورزی شورزیست: راهبردهای مدیریت گیاه، آب و خاک. انتشارات دانشگاه فردوسی مشهد. مشهد. 380 صفحه.
12
Alloway, B.J., 1990. Heavy metal in soils. John Wiley and Sons Inc. New York. pp: 20-27.
13
Anele, U.Y.; Sudekum, K.H.; Hummel, J.; Arigbede, O.M.; Oni, A.O.; Olanite, J.A. and Jolaosho, A.O., 2011. Chemical characterization, in vitro dry matter and ruminal crude protein degradability and microbial protein synthesis of some cowpea (Vigna unguiculata L. Walp) haulm varieties. Animal Feed Science and Technology. Vol. 163, pp: 161-169.
14
Attia-Ismail, S.A., 2008. Role of minerals in halophyte feeding to ruminants. In: M.N.V. Prasad (ed.). Trace Elements: Nutritional Benefits, Environmental Contamination, and Health Implications. pp: 701-720.
15
Attia-Ismail, S.A., 2015. Plant secondary metabolites of halophytes and salt tolerant plants, In: El Shaer and Squires, editors. Halophytic and Salt Tolerant Feedstuffs: Impacts on Nutrition, Physiology and Reproduction of Livestock. CRC Press. pp: 127-142.
16
Ayyad, M.A. and El-Ghareeb, R.E.M., 1982. Salt marsh vegetation of the Western Mediterranean desert of Egypt.Vegetatio. Vol. 49, No 1, pp: 3-19.
17
Ben Salem, H.; Norman, H.C.; Nefzaoui, A.; Mayberry, D.E.; Pearce, K.L. and Revell, D.K., 2010. Potential use of Oldman saltbush (Atriplex nummularia Lindl.) in sheep and goat feeding. Small Ruminant Research. Vol. 91, pp: 13-28.
18
Benjamin, R.W.; Oren, E.; Katz, E. and Becker, K., 1992. The apparent digestibility of Atriplex barclayana and its effect on nitrogen balance in sheep. Animal Production. Vol. 54, pp: 259-264.
19
Blummel, M. and Bullerdieck, P., 1997. The need to complement gas production measurements with residue determination from in sacco degradability to improve the prediction of voluntary intake of hays. Animal Science. Vol. 64, pp: 71-75.
20
Blummel, M. and Ørskov, E.R., 1993. Comparison of gas production and nylon bag degradability of roughages in predicting feed intake in cattle. Animal Feed Science and Technology. Vol. 40, pp: 109-119.
21
Dzowela, B.H.; Hove, L.; Topps, J.H. and Mafongoya, P.L., 1995. Nutritional and anti nutritional characters and rumen degradability of dry matter and nitrogen for some multipurpose tree species with potential for agroforestry in Zimbabwe. Animal Feed Science and Technology. Vol. 55, pp: 207-214.
22
El Shaer, H.M., 2010. Halophytes and salt-tolerant plants as potential forage for ruminants in the Near East region. Small Ruminant Research. Vol. 91, pp: 3-12.
23
El-Tantawy, H., 2018. The Nutritional Value of some Desert plants in Kuwait. Arabian Pennisula. Taeckholmia. Vol. 22, No. 1, pp: 35-45.
24
Getachew, G.; Makkar, H.P.S. and Becker, K., 2002. Tropical browses: contents of phenolic compounds, in vitro gas production and stoichiometric relationship between short chain fatty acid and in vitro gas production.The Journal of Agricultural Science. Vol. 139, pp: 341-352.
25
Glenn, E.P.; Brown, J.J. and O'Leary, J.W., 1998. Irrigating crops with seawater. Scientific American. Vol. 729, No. 2, pp: 76-81.
26
Goering, H.K. and Van Soest, P.J., 1970. Forage Fiber Analysis (Apparatus Reagents, Procedures and Some Applications). Agriculture Handbook. United States Department of Agriculture, Washington DC.
27
Hoffman, P.C.; Sievert, S.J.; Shaver, R.D., Welch, D.A. and Combs, D.K., 1993. In situ dry matter, protein and fiber degradation of perennial forages. Journal of Dairy Science. Vol. 76, pp: 2632-2642.
28
Imai, H.; kinoshita, M. and Ohnishi, M., 2004. Chemi-cal characterization of glycerolipds and cere-brosides in halophytic plant, Salicornia europaea. Journal of Oleo Science. Vol. 53, pp: 337-341.
29
Isaacs, J. and Owens, F.N., 1972. Protein soluble in rumen fluid. Journal of Animal Science. Vol. 35, No. 1, pp: 267-272.
30
Ishikawa, N.; Shmizu, K.; Koizumi, T.; Shimizu, T. and Enishi, O., 2002. Nutrient value of saltwort (Salicornia herbacea. L) as feed for ruminants. Asian Australian Journal of Animal Science. Vol. 15, pp: 998-1001.
31
Jackson, F.S.; Barry, T.N.; Lascano, C. and Palmer, B., 1994. The extractable and bound condensed tannin content of leaves from tropical tree, shrub and forage legumes. Journal of Science Food Agriculture. Vol. 71, pp: 103-110.
32
Kadereit, G.; Ball, P.; Beer, S.; Mucina, L.; Sokoloff, D.; Teege, P.; Yaprak, A.E. and Freitag, H., 2007. A taxonomic nightmare comes true: phylogeny and biogeography of glassworts (Salicornia L. henopodiaceae). Taxon. Vol. 56, pp: 1143-1170.
33
Kafi, M.; Zamani, G. and Poyan, M., 2010. Study the domestication possibility of four halophyte species using brakish and saline irrigation water. Iranian Journal of Range and Desert Research. Vol. 172, pp: 276-291.
34
Kraidees, M.S.; Abouheif, M.A.; Al-Saiady, M.Y.; Tag Eldin, A. and Metwally, H., 1998. The effect of dietary inclusion of halophyte Salicornia bigelovii Torr on growth performance and carcass characteristics of lambs. Animal Feed Science and Technology. Vol. 76, No. 1-2, pp: 149-159.
35
Laudadio, V.; Tufarelli, V.; Dario, M.; Hammadi, M.; Seddik, M.M.; Lacalandra, G.M. and Dario, C., 2009. A survey of chemical and nutritional characteristics of halophytes plants used by camels in Southern Tunisia. Tropical animal health and production. Vol. 41, No. 2, pp: 209-215.
36
Lila, Z.A.; Mohammed, N.; Kanda S.; Kamada, T. and Itabashi, H., 2003. Effect of saponin on ruminal fermentation with particular reference to methane production in vitro. Journal of Dairy Science. Vol. 86, pp: 3330-3336.
37
Makkar, H.P.S., 2005. In vitro gas methods for evaluation of feeds containing phytochemicals. Animal. Feed Science and Technology. Vol. 123, pp: 291-302.
38
Masters, D.G.; Benes, S.E. and Norman, H.C., 2007. Biosaline agriculture for forage and livestock production. Agriculture, Ecosystems and Environment. Vol. 119, pp: 234-248.
39
Mcsweeny, C.S.; Palmer, B.; McNeill, D.M. and Krause, D.O., 2001. Microbial interaction with tannin: nutritional consequences for ruminants. Animal Feed Science and Technology. Vol. 91, pp.83-93.
40
Menke, K.H. and Steingass, H., 1988. Estimation of the energetic feed value obtained from chemical analysis and gas production using rumen fluid. Animal Research and Development. Vol. 28, pp: 7-55.
41
Milic, D.; Lukovic, J.; Ninkov, J., 2012. Heavy metal content in halophytic plants from inland and maritime saline areas. Central European Journal of Biology. Vol, 7, pp: 307-317.
42
Mishra, A. and Tanna, B., 2017. Halophytes: Potential Resources for Salt Stress Tolerance Genes and Promoters. Frontiers in Plant Science. Vol. 8, 829 p.
43
Nugent, J.H. A. and Mangan, J.L., 1978. Rumen proteolysis of fraction 1 leaf protein, casein and bovine serum albumin. Proceedings of the Nutrition Society. Vol. 37, 48 p.
44
Ørskov, E.R. and McDonald, I., 1979. The estimation of protein degradability in the rumen from incubation measurements weighted according to rate of passage. The Journal of Agricultural Science. Vol. 92, No. 2, pp: 499-503.
45
Ozturk, M.; Boer, B.; Barth, H.J.; Breckle, S.W.; Clusener-Godt, M. and Khan, M.A., 2011.Sabkha Ecosystems. Volume III: Africa and Southern Europe. Springer. pp: 1-148.
46
Rezvani Moghaddam, P. and Koocheki, A., 2004. History of research on salt-affected lands of Iran. In Prospects of Saline Agriculture in the Arabian Peninsula. pp: 83-95.
47
Russell, J.B.; O'connor, J.D.; Fox, D.G.; Van Soest, P.J. and Sniffen, C.J., 1992. A net carbohydrate and protein system for evaluating cattle diets: I. Ruminal fermentation. Journal of Animal Science. Vol. 70, pp: 3551-3561.
48
SAS Institute Inc. 2009 .SAS/STAT User’s Guide: Version 9.2. 2nd edn. SAS Institute Inc; Cary, NC, USA.
49
Sullivan, J.E.; Owens, F.N. and Shockey, B.J., 1973. Corn roasting temperature e nutrient availability. Journal of Animal Science. Vol. 37, pp: 291-298.
50
Swingle, R.S.; Glenn, E.P. and Squires, V., 1996. Growth performance of lambs fed mixed diets containing halophyte ingredients.Animal Feed Science and Technology. Vol. 631, No. 4, pp: 137-148.
51
Tag El-Din, A.E., 2012. Halophytes as feedstuffs in feeding farm animals, a review. Journal Agricultural and Environmental Science. Vol. 11, No. 2, pp. 1-33.
52
Tavendale, M.H.; Meagher, L.P.; Pacheco, D.; Walker, N.; Attwood, G.T. and Sivakumaram, S., 2005. Methane production from in vitro rumen incubations with Lotus pedunculatus and Medicago sativa, and effects of extractable condensed tannin fractions on methanogenesis. Animal Feed Science and Technology. Vol. 124, pp: 403-419.
53
Theodorou, M.K.; Williams, B.A.; Dhanoa, M.S.; McAllan, A.B. and France, J., 1994. A simple gas production method using a pressure transducer to determine the fermentation kinetics of ruminant feedstuffs. Animal Feed Science and Technology. Vol. 48, pp: 185-197.
54
Turgut, L.; Yanar, M.; Tuzemen, N. and Comakli, B., 2008. Effect of maturity stage on chemical composition in situ ruminal degradability kinetics of meadow hay in Awassi sheep. Journal of Animal and Veterinary Advances. Vol. 7, No. 9, pp: 1061-1065.
55
Van Soest, P.J.; Robertson, J.B. and Lewis, B.A., 1991. Methods for dietary fiber, neutral detergent fiber, and nonstarch polysaccharides in relation to animal nutrition.Journal of Dairy Science. Vol. 74, No. 10, pp: 3583-3597.
56
Yasseen, B.T.; Abu-Al-Basal, M.A. and Alhadi, F.A., 2010. An analysis of leaf growth under osmotic stress. Journal of Plant Science. Vol. 5, pp: 391-401.
57
Zakery-Asl, M.A.; Bolandnazar, S.; Oustan, S.H. and Tabatabaei, S.J., 2014. Effects of NaCl salinity and nitrogen levels on growth, and vitamin C and nitrate concentrations of halophyte vegetable Suaeda aegyptiaca. Journal of Water and Soil Science. Vol. 24, No. 1, pp: 239-250.
58
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین دوز بهینه eCG به منظور بهبود عملکرد تولیدمثلی میشهای لکقشقایی در فصل تولیدمثل
این پژوهش در یک سامانه پرورش عشایری به منظور بررسی تأثیر دوزهای متفاوت eCG بر عملکرد تولیدمثلی میش ها در فصل پاییز انجام شد. در این آزمایش 75 رأس میش لک قشقایی با میانگین وزنی 2/3±54 کیلوگرم از یک گله سالم انتخاب شد. به منظور هم زمان سازی فحلی، اسفنج های پروژسترونی در داخل واژن همه میش ها وارد شدند و پس از 12 روز خارج گردیدند. یک روز قبل از اسفنج برداری، میش ها به طور تصادفی به پنچ گروه تقسیم شدند و هورمون eCG در دوز IU300 به گروه 1، در دوز IU400 به گروه 2، در دوز IU500 به گروه 3، در دوز IU600 به گروه 4 به صورت درون ماهیچه ای تزریق شد. گروه 6 به عنوان شاهد درنظر گرفته شد. متغیرهای تولیدمثلی از قبیل شروع فحلی (بر حسب ساعت پس از برداشت اسفنج)، درصد فحلی، نرخ آبستنی، میزان دوقلوزایی، نرخ برهزایی و نرخ چندقلوزایی در همه گروه ها مورد سنجش قرار گرفت. نتایج نشان داد که پس از اسفنج برداری، شروع فحلی در گروه 3 و 4 به طور معنی داری نسبت به گروه های شاهد، 1 و 2 زودتر بود (0/05>P). هیچ اختلاف معنی داری بین شش گروه از نظر سایر فراسنجه های تولیدمثلی وجود نداشت (0/05<P). با این حال، تعداد بره متولد شده و فکاندیتی و هم چنین نرخ دوقلوزایی و پرولیفیکیسی در گروه 4 و به ویژه در گروه 3 در مقایسه با سایر گروه ها بالاتر بود. به طورکلی نتایج نشان داد که دوز 500 واحد بینالمللی eCG دارای بیش ترین تأثیر در افزایش عملکرد تولیدمثلی در میش های لک قشقایی در فصل پاییز بود.
http://www.aejournal.ir/article_110207_6e44ef87d24e23a4a2f5c84ba9668200.pdf
2020-09-22
33
40
10.22034/aej.2020.110207
گونادوترپین جفت اسبسانان (eCG)
میش لکقشقایی
عملکرد تولیدمثلی
نرخ دوقلوزایی
جواد
حبیبی زاد
j_habibi58@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه یاسوج، یاسوج، ایران
AUTHOR
محسن
توحیدی
mohsen.tohidi@yahoo.com
2
اداره کل امور عشایر استان کهگیلویه و بویراحمد، یاسوج، ایران
AUTHOR
فرهاد
صمدیان
fsamadian@yu.ac.ir
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه یاسوج، یاسوج، ایران
LEAD_AUTHOR
خالداری، م.، 1382. اصول پرورش گوسفند و بز. چاپ اول. انتشارات جهاد دانشگاهی تهران. صفحات 290 تا 324.
1
لطفی، م.؛ زارع شحنه، ا.؛ ژندی، م. و اکبری شریف، ع.، 1392. اثر توأم و جداگانه دو گونادوتروپین eCG و FSH بر فراسنجه های تولیدمثلی در میش های نژاد زندی. مجله دامپزشکی ایران. دوره 9، صفحات 98 تا 105.
2
محمودزاده، ع.، 1377.انتقال جنین (و بیوتکنولوژی وابسته به آن) در حیوانات اهلی. چاپ اول. انتشارات دانشگاه گیلان. صفحات 50 تا 58.
3
Akoz, M; Bulbul, B; Ataman, M.B. and Dere, S., 2006. Induction of multiple births in Akkaraman cross-bred sheep synchronized with short duration and different doses progesterone treatment combined with PMSG outside the breeding season. Bulletin of the Veterinary Institute in Pulawy. Vol. 50, pp: 97-100.
4
Ali, A., 2007. Effect of time of eCG administration on follicular response and reproductive performance of FGA treated Ossimi ewes. Small Ruminant Research. Vol. 72, pp: 33-37.
5
Allen, W.R. and Moor, R.M., 1972. The origin of the equine endometrial cups. I. Production of PMSG by fetal trophoblast cells. J of Reproduction and Fertility. Vol. 29, pp: 313-316.
6
Avendano-Reyes, L.; Alvarez-Valenzuela, F.D.; Molina Ramlrez, L.; Rangel-Santos, R.; Correa-Calderon, A.; Rodrlguez-Garcla, J.; Cruz-Villegas, M.; Robinson, P.H. and Famula, T.R., 2007. Reproduction performance of Pelibuey ewes in response to estrus synchronization and artificial insemination in Northwestern Mexico. Journal of Animal and Veterinary Advances. Vol. 6, pp: 807-812.
7
Barrett, D.; MBartlewski, P.M.; Batista-Arteaga, M.; Symington, A. and Rawlings, N.C., 2004. Ultrasound and endocrine evaluation of the ovarian response to a single dose of 500 IU eCG following a 12- day treatment with progestagen-releasing intravaginal sponges in the breeding and non-breeding season in ewes. Theriogenology. Vol. 61, pp: 311-327.
8
Ben-Said, S.; Lomet, D.; Chesneau, D.; Lardic, L.; Canepa, S.; Guillaume, D.; Briant, C.; Fabre-Nys, C. and Caraty, A., 2007. Differential estradiol requirement for the induction of estrus behavior and the luteinizing hormone surge in two breeds of sheep. Biology of Reproduction. Vol. 76, pp: 673-680.
9
Boscos, C.M.; Samartzi, F.C.; Dellis, S.; Rogge, A.; Stefanakis, A. and Krambovitis, E., 2002. Use of progestogen gonadotrophin treatment in estrus synchronization of sheep. Theriogenology. Vol. 58, pp: 1261-1272.
10
Cam, M.A. and Kuran, M., 2003. Effects of a single injection of hCG or GnRH agonist on day 12 post mating on fetal growth and reproductive performance of sheep. Animal Reproduction Science. Vol. 80, pp: 81-90.
11
Cline, M.A.; Ralston, J.N.; Seals, R.C. and Lewis, G.S., 2001. Intervals from norgestomet withdrawal and injection of equine chorionic gonadotrophin or P.G. 600 to estrus and ovulation in ewes. Journal of Animal Science. Vol. 79, pp: 589-594.
12
Emsen, E. and Yaprak, M., 2006. Effect of controlled breeding on the fertility of Awassi and Red Karaman ewes and the performance of the offspring. Small Ruminant Research. Vol. 66, pp: 230-235.
13
Fallah Rad, A.H. and Farzaneh, N., 2007. Effect of CIDR and different doses of PMSG on pregnancy and lambing rate out of breeding season in Balouchi ewes. Journal of Animal Veterinary Advances. Vol. 6, pp: 1167-1171.
14
Gomez-Brunet, A.; Santiago-Moreno, J.; Montoro, V; Garde, J.; Pons, P.; Gonzalez-Bulnes, A. and Opez Sebastian, A.L., 2006. Reproductive performance and progesterone secretion in estrus induced Manchega ewes treated with hCG at the time of AI. Small Ruminant Research. Vol. 71, pp: 117-122.
15
Hashem, N.M.; El-Azrak, K.M.; Nour El-Din, A.N.M.; Taha, T.A. and Salem, M.H., 2015. Effect of GnRH treatment on ovarian activity and reproductive performance of low-prolific Rahmani ewes. Theriogenology. Vol. 83, No. 2, pp: 192-198.
16
Hashemi, M.; Safdarian, M. and Kafi, M., 2006. Estrous response to synchronization of estrus using different progesterone treatments outside the natural breeding season in ewes. Small Ruminant Research. Vol. 65, pp. 279-283.
17
Husein, M.Q. and Ababneh, M.M., 2008. A new strategy for superior reproductive performance of ewes bred out-of-season utilizing progestagen supplement prior to withdrawal of intravaginal pessaries. Theriogenology. Vol. 69, pp: 376-383.
18
Ince, D. and Karaca, O., 2009. Effects of oestrus synchronization and various doses of PMSG administrations in Chios x Kivircik (F1) sheep on reproductive performances. J of Animal Veterinary Advances. Vol. 8, pp: 1948-1952.
19
Kara, C.; Orman, A.; Topal, E. and Carkungoz, E., 2010. Effects of supplementary nutrition in Awassi ewes on sexual behaviors and reproductive traits. Journal of Biology and Environmental Sciences. Vol. 4, pp: 15-21.
20
Karagiannidis, A.; Varsakeli, S.; Karatazas, G. and Brozos, C., 2001. Effect of the time of artificial insemination on fertil-ity of progestagens and PMSG treated indigenous Greek ewes, during non-breeding season. Small Ruminant Research. Vol. 39, pp: 67-71.
21
Kermani-Moakhar, H.; Kohram, H.; Zareh-Shahneh, A. and Saberifar, T., 2011. Ovarian response and pregnancy rate following different doses of eCG treatment in Chall ewes. Small Ruminant Research. Vol. 102, pp: 63-67.
22
Kridli, R.T. and Al-Khetib, S.S., 2006. Reproductive responses in ewes treated with eCG or increasing doses of royal jelly. Animal reproduction science. Vol. 92, pp: 75-85.
23
Koyuncu, M. and Alticekic, S.O., 2010. Effects of progestagen and PMSG on estrous synchronization and fertility in Kivircik ewes during natural breeding season. Asian-Australian J of Animal Science. Vol. 23, pp: 308-311.
24
Koyuncu, M.; Yerlikaya, H. and Altincekic, S.O., 2008. Effect of injection with dexamethasone and progestogens PMSG on reproduction and rearing of lambs in semi intensive condition. J of Biological Sciences. Vol. 11, pp: 680-682.
25
Luther, J.S.; Grazul-Bilska, A.T.; Kirsch, J.D.; Weigl, R.M.; Kraft, K.C.; Navanukraw, C.; Pant, D.; Reynolds, L.P. and Redmer, D.A., 2007. The effect of GnRH, eCG and progestin type on estrous synchronization following laparoscopic AI in ewes. Small Ruminant Research. Vol. 72, pp: 227-231.
26
Maclas-Cruz, U.; Alvarez-Valenzuela, F.D.; Correa Calderon, A.; Molina-Ramlrez, L.; Gonzalez-Reyna, A.; Soto-Navarro, S. and Avendano-Reyes, L., 2009. Pelibuey ewe productivity and subsequent pre-weaning lamb performance using hair-sheep breeds under a confinement system. J of Applied Animal Research. Vol. 36, pp: 255-260.
27
Menchaca, A.; Miller, V.; Salveraglio, V. and Rubianes, E., 2007. Endocrine, luteal and follicular responses after the use of the Short-Term protocol to synchronize ovulation in goats. Animal Reproduction Science. Vol. 102, pp: 76-87.
28
Metodiev, N. and Raicheva, E., 2011. Effect of the short term progestagen treatments plus PMSG prior ram introduction on the estrus synchronization and the fertility of ILE DE france ewes. Biotechnology in Animal Husbandry. Vol. 27, pp: 1157-1166.
29
Mossa, F.; Duffy, P.; Naitana, S.; Lonergan, P. and Evans, A.C.O., 2007. Association between numbers of ovarian follicles in the first follicle wave and superovulatory response in ewes. Animal Reproduction Science. Vol. 100, pp: 391-396.
30
Nosrati, M.; Tahmorespoor, M.; Vatandoost, M. and Behgar, M., 2011. Effects of PMSG doses on reproductive performance of Kurdi ewes artificially inseminated during breeding season. Iranian Journal of Applied Animal Science. Vol. 1, pp: 125-129.
31
Quintero-Elisea, J.A.; Maclas-Cruz, U.; Alvarez Valenzuela, F.D.; Correa-Calderon, A.; Gonzalez-Reyna, A.; Lucero-Magana, F.A.; Soto-Navarro, S.A. and Avendano-Reyes, L., 2011. The effects of time and dose of pregnant mare serum gonadotropin (PMSG) on reproductive efficiency in hair sheep ewes. Tropical Animal Health Production. Vol. 43, pp: 1567-1573.
32
Rahman, M.R.; Rahman, M.M.; Wan Khadijah, W.E. and Abdullah, R.B., 2014. Comparison of superovulatory effect of Equine Chorionic Gonadotrophin and Follicle Stimulating Hormone on embryo production in crossbred (Boer × Katjang) goats. Pakistan Journal of Zoology. Vol. 46, pp: 819-826.
33
Simonetti, L.; Blanco, M.R. and Gardon, J.C., 2000. Estrus synchronization in ewes treated with sponge impregnated with different doses of medroxyprogesterone acetate. Small Ruminant Research. Vol. 38, pp: 243-247.
34
Simonetti, L.; Forcada, F.; Rivera, O.E.; Carou, N.; Alberio, R.H.; Abecia, J.A. and Palacin, I., 2007. Simplified superovulatory treatments in Corriedale ewes. Animal Reproduction Science. Vol. 45, pp: 95-113.
35
Timurkan, H. and Yildiz, H., 2005. Synchronization of oestrus in Hamdani ewes: the use of different PMSG doses. Bulletin of veterinary institute in pulawy. Vol. 49, pp: 311-314.
36
Zare-Shahneh, A.; Deldar-Tajangookeh, H.; Sadeghipanah, H. and Saki, A.A., 2006. Effect of controlled internal drug release device treatment duration and eCG dose on reproductive performance of seasonally anestrous fat-tailed Iranian ewes. Pakistan Journal of Biological Science. Vol. 9, pp: 1552-1555.
37
Zeleke, M.; Greyling, J.P.C.; Schwalbach, L.M.J.; Muller, T. and Erasmus, J.A., 2005. Effect of progestagen and eCG on oestrus synchronization and fertility in Dorper ewes during the transition period. Small Ruminant Research. Vol. 56, pp: 47-53.
38
Zonturlu, A.K.; Ozyurtlu, N. and Kacar, C., 2011. Effect of different doses PMSG on estrus synchronization and fertility in Awassi ewes synchronized with progesterone during the transition period. Kafkas üniversitesi veteriner fakültesi dergisi. Vol. 17, pp: 125-129.
39
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات عمل آوری فیزیکوشیمیایی دانه گندم بر جمعیت میکروبی شکمبه، فراسنجه های بیوشیمیایی و ایمنی خون بره های نر پرواری افشاری
این پژوهش به منظور بررسی اثرات روش های فرآوری دانه گندم بر عملکرد رشد، جمعیت میکروبی شکمبه، فراسنجه های بیوشیمیایی و ایمنی خون بره های پرواری انجام شد. ابتدا نمونه های دانه گندم بر حسب گروه های تیماری با اوره، هیدروکسیدسدیم و فرمالدئید عمل آوری شیمیایی شدند سپس به دو روش آسیاب و پلت، عمل آوری فیزیکی شدند. ترکیب شیمیایی و جیره های آزمایشی تعیین شدند. این آزمایش در اسفندماه 1396 در مزرعه تحقیقاتی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان انجام شد. تعداد 30 رأس بره نر افشاری با میانگین وزن اولیه 3±31/21 کیلوگرم در قالب طرح کاملاً تصادفی با 6 تیمار و 5 تکرار به مدت 84 روز پروار شدند. از جیره آزمایشی با فرمول مشترک برای کلیه تیمارها استفاده شد که تفاوت آن ها در نوع گندم فراوری شده مورد استفاده در جیره بود. تیمارهای آزمایشی شامل: 1-جیره حاوی دانه گندم کامل، 2-جیره حاوی دانه گندم آسیاب شده، 3- جیره حاوی دانه گندم عمل آوری شده با اوره و هیدروکسیدسدیم و آسیاب شده، 4-جیره حاوی دانه گندم عمل آوری شده با اوره و فرمالدئید و آسیاب شده ، 5-جیره حاوی دانه گندم عمل آوری شده با اوره و هیدروکسیدسدیم و پلت شده و 6-جیره حاوی دانه گندم عمل آوری شده با اوره و فرمالدئید و پلت شده بود. برای اندازه گیری جمعیت میکروبی در روز 80 نمونه گیری از مایع شکمبه انجام شد. خونگیری در روز پایانی انجام شد. بررسی فراسنجه های بیوشیمیایی و ایمنی خون به جز نیتروژن آمونیاکی حاکی از عدم تاثیر معنی دار تیمارهای آزمایشی بر روی هیچ کدام از این فراسنجه ها بودند. در ارتباط با جمعیت میکروبی، نتایج نشان داد عمل آوری به طور معنی داری منجر به افزایش جمعیت کل باکتری ها و پروتوزآ شد. نتایج این بررسی نشان داد مصرف دانه گندم فرآوری فیزیکی-شیمیایی شده نسبت به گندم بدون فراوری و گندم آسیاب شده به تنهایی بدون تاثیر منفی بر فراسنجه های بیوشیمیایی و ایمنی خون و با تاثیر مثبت بر جمعیت میکروبی شکمبه در تغذیه بره های پرواری قابل استفاده است.
http://www.aejournal.ir/article_110258_1c49b8d3adfdf7c72ee9b16cfe9aa75b.pdf
2020-09-22
41
50
10.22034/aej.2020.110258
بره پرواری
جمعیت میکروبی
فراسنجه های خونی
فرآوری
امین
ولی زاده قلعه بیگ
valizadeh64@gmail.com
1
گروه تغذیه دام و طیور، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
تقی
قورچی
ghoorchit@yahoo.com
2
گروه تغذیه دام و طیور، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سعید
حسنی
saeedh_2000@yahoo.com
3
گروه ژنتیک و اصلاح و فیزیولوژی دام و طیور، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
افشار، س.م.؛ طباطبایی، م.؛ ساکی، ع.ا. و زمانی، پ.، 1389. تعیین اثر فرآوری بر ارزش غذایی دانه جو و مقایسه ضرایب قابلیت هضم جیره های متأثر از این فرآیند و منابع نیتروژنه مختلف در گوسفند مهربان. مجله پژوهش های علوم دامی. دوره 20، شماره 4، صفحات 103 تا 113.
1
قورچی، ت. و قربانی، ب.، 1390. میکروبیولوژی شکمبه. انتشارات دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 178 صفحه.
2
کاظمی، ف.، 1396. بررسی اثر جایگزینی جو با انواع ذرت فرآوری شده بر عملکرد رشد، قابلیت هضم ماده خشک، فراسنجه های شکمبه ای و خونی، جمعیت میکروبی، پروتئین میکروبی، فعالیت آنزیم سلولاز و سودآوری اقتصادی بره های نژاد افشاری. رساله دکتری دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 117 صفحه.
3
Adeloy., A., 2001. Improving the nutritiv value of rice straw by ensiling with different additives. Indian Journal of Animal Sciences. Vol. 71, pp: 58-61.
4
AOAC. 2005. International official methods of analysis. 15th ed Association of Official Analytical Chemists, Arlington, USA.
5
Bauchart, D., 1993. Lipid absorption and transport in ruminants. Journal of dairy sciences. Vol. 76, pp: 3864-3881.
6
Bengochea, W.L.; Lardy, G.P.; Bauer, M.L. and Navarro, S.A., 2005. Effect of grain processing degree on intake, digestion, ruminal fermentation and performance characteristics of steer fed medium concentrate growing diet. Journal of Animal Sciences. Vol. 83, pp: 2815-2825.
7
Bonhomme, A., 1990. Rumen ciliate: their metabolism and relationship with bacteria and their hosts. Anim. F. Sci. Tech. Vol. 30, pp: 203-266.
8
Castillo, C.; Benedito, J.L.; Pereira, V.; Sotillo, J.; Suárez, A.; Méndez, J.; Vázquez, P. and Hernández, J., 2011. Influence of grain processing in regard to serum metabolites and enzymes for finishing bull calves. J. Anim. F. Sci. Vol. 20, pp: 483-492.
9
Coverdale, J.A.; Tyler, H.D.; Quigley, J.D. and Brumm, J.A., 2004. Effect of various levels of forage and form of diet on rumen development and growth in calves. J. Dair. Sci. Vol. 87, pp: 2554-2562.
10
Dehghan-banadak, M.; Corbett, R. and Oba, M., 2007. Effects of barley grain processing on productivity of cattle. J. Anim. F. Sci. Tech. Vol. 137, pp: 1- 24.
11
Dehority, B.A., 1986. Protozoa of the digestive tract of herbivorous mammals. Ins. Sci. Appl. Vol. 7, pp: 279- 296.
12
Dehority, B.A., 2003. Rumen Microbiology. Nottingham University Press, Nottingham, UK.
13
Ghoorchi, T.; Lund, P.; Larsen, M.; Hvelplund, T.; Hansen-Møller, J. and Weisbjerg, M.R., 2013. Assessment of the mobile bag method for estimation of in vivo starch digestibility. Animal. Vol. 7, pp: 265-271.
14
Harmon, D.L., 1992. Impact of nutrition on pancreatic exocrine and endocrine secretion in ruminants: a review. J. Anim. Sci. Vol. 70, pp: 1290-1301.
15
Herrea-Saldana, R.; Huber, J.T. and Poore, M.H., 1990. Dry matter, crude protein, and starch degradability of five cereal grains. J. Dair. Sci. Vol. 73, pp: 2386-2393.
16
Hristov, A.N.; Ivan, M.; Rode, L.M. and McAllister, T.A., 2001. Fermentation characteristics and ruminal ciliate protozoal populations in cattle fed medium or high concentrate barley-based diets. J. Anim. Sci. Vol. 79, pp: 515-524.
17
Huntington, G.; Harmon, D. and Richards, C., 2006. Sites, Rates, and Limits of Starch Digestion and Glucose Metabolism in Growing Cattle. J. Anim. Sci. Vol. 84, pp: E14-E24.
18
Huuskonen, A., 2011. Effects of barley grain processing method (steam-processed vs. dry rolled) on intake and growth performance of dairy calves, Acta Agriculturae Scandinavica, Section A. Anim. Sci. Vol. 61, pp: 137-144.
19
Kamra, D.N.; Saha, S.; Bhatt, N.; Chaudhary, L.C. and Agarwal, N., 2003. Effect of diet one nzyme profile, biochemical changes and in sacco degradability of feeds in the rumen of buffalo. Asian- Australian J. Anim. Sci. Vol. 16, pp: 374-379.
20
Khan, M.A.; Lee, H.J.; Lee, W.S.; Kim, H.S.; Kim, S.B.; Ki, K.S.; Park, S.J.; Ha, J.K. and Choi, Y.J., 2007. Starch source evaluation in calf starter: I. Feed consumption, body weight gain, structural growth, and blood metabolites in Holstein calves. J. Dair. Sci. Vol. 90, pp: 5259-5268.
21
Khan, M.; Lee, H.; Lee, W.; Kim, H.; Ki, K.; Hur, T.; Suh, G.; Kang, S. and Choi, Y., 2007a. Structural Growth, Rumen Development, and Metabolic and Immune Responses of Holstein Male Calves Fed Milk through Step-Down and Conventional Methods. Journal of dairy sciences. Vol. 90. No. 7, pp: 3376-3387.
22
Kim, W.K. and Patterson, P.H., 2003. In situ evaluation of hen mortality meal as a protein supplement for dairy cows. Journal of dairy sciences. Vol. 86, pp: 3337-3342.
23
Klein-jobstl, D.; Lwersen, M. and Drillich, M., 2014. Farm characteristics and calf management practices on dairy farms with and without diarrhea: a case-control study to investigate risk factors for calf diarrhea. Journal of dairy sciences. Vol. 97, pp: 5110-5119.
24
Mendoza, G.; Britton, R. and Stock. R., 1993. Influence of ruminal protozoa on site and extent of starch digestion and ruminal fermentation. J. Anim. Sci. Vol. 71, pp: 1572-1578.
25
Minor, D.J.; Trower, S.L.; Strang, B.D.; Shaver, R.D. and Grummer, R.R., 1998. Effects of nonfiber carbohydrate and niacin on periparturient metabolic status of lactation dairy cows. J. Dair. Sci. Vol. 81, pp: 189-200.
26
Mosoni, P.; Chaucheyras-Durand, F.; Be ra-Maillet, C. and Forano, E., 2007. Quantification by real-time PCR of cellulolytic bacteria in the rumen of sheep after supplementation of a forage diet with readily fermentable carbohydrates: effect of a yeast additive. J. Appl. Micro. Vol. 103, pp: 2676-2685.
27
NRC. 2007. Nutrient Requirements of Small Ruminants: Sheep, Goats, Cervids, and New World Camelids. 6th. Ed Washington, DC: National Academy Press. 384 p.
28
Owens, F.N.; Zinn, R.A. and Kim, Y.K., 1986. Limits to starch digestion in the ruminant small intestine. J. Anim. Sci. Vol. 63, pp: 1634-1648.
29
Patra, A.K.; Sharma, K.; Dutta, N. and Pattanaik, A.K., 2003. Response of gravid does to partial replacement of dietary protein by a leaf meal mixture of Leucaena leucocephala, Morus alba and Azadirachta indica. J. Anim. F. Sci. Tech. Vol. 109, pp: 171-182.
30
Porter, J.C.; Warner, R.G. and Kertz, A.F., 2007. Effect of fiber level and physical form of starter on growth and development of dairy calves fed no forage. Profes. J. Anim. Sci. Vol. 23, pp: 395-400.
31
Quezada-Mendoza, V.C.; Heinrichs., A.J. and Jones, C.M., 2011. The effects of a prebiotic supplement (Prebio Support) on fecal and salivary. J. Liv. Sci. Vol. 142, pp: 222-228.
32
Robinson, P.H. and Kennelly, J.J., 1998. Influence of ammoniation of high moisture barley on its in situ rumen degradability and influence on rumen fermentation in dairy cows. Canadian J. Anim. Sci. Vol. 68, pp: 839-851.
33
Rooney, L.W. and Pflugfelder, R.L.R., 1986. Factors affeting starch digestibility with special emphairs on sorghum and corn. J. Anim. Sci. Vol. 63, pp: 1607-1623.
34
Rowe, B.; Choct, M.D. and Pethick, W., 1999. Processing cereal grains for animal feeding. Australian J.Agri. Res. Vol. 50, pp: 721-736.
35
Russell, J.B.; O’Connor, J.D.; Fox, D.G.; VanSoest, P.J. and Sniffen, C.J., 1992. A net carbohydrate and protein system for evaluating cattle diets. I. Ruminal fermentation. J. Anim. Sci. Vol. 70, pp: 3551-3561.
36
SAS. 2001. Users Guide: Statistics, version 9.1. Cary, NC, USA: SAS Institute, Inc.
37
Stell, A.V.; Paratte, R.; Valnegri, L.; Cigalino, G.; Soncini, G.; Chevaux, E.; Dell orto, V. and Savoini, G., 2005. Effect of administration of live Saccharomyces cerevisiae on milk production, milk composition, blood metabolites, and faecal flora in early lactating dairy goats. J. Sma. Rumi. Vol. 67, pp: 7-13.
38
Subuh, A.M.H.; Rowan, T.G. and Lawrence, T.L.J., 1996. Effect of heat or formaldehyde treatment and differences in basal diet on the rumen degradability of protein in soybean meal and in rapeseed meals of different glucosinolate content. J. Anim. F. Sci.Tech. Vol. 49, pp: 297-310.
39
Towne, G.; Nagaraja, T.G. and Brandt, R.T., 1990. Ruminal ciliated protozoa in cattle fed finishing diets with or without supplemental fat. Journal of Animal Sciences. Vol. 68, pp: 2150-2155.
40
Van Soest, P.J.; Robertson, J.B. and Lewis, B.A., 1991. Methods for dietary fiber, neutral detergent fiber, and non-starch polysaccharaides in relation to animal nutrition. J. Dair. Sci. Vol. 74, pp: 3593-3597.
41
Yesilada, E.; Deliorman, D.; Ergun, F.; Takaishi, Y. and Ono, Y., 1998. Effects of the Turkish subspecies of Viscum album on macrophage derived cytokines. J. Ethnopha. Vol. 61, pp: 195-200.
42
Zhang, Y.Q.; He, D.Ch. and Meng, Q.X., 2010. Effect of a mixture of steam-flaked corn and soybeans on health, growth, and selected blood metabolism of Holstein calves. J. Dair. Sci. Vol. 93. No. 5, pp: 2271-2279.
43
Zinn, R.; Barreras, A.; Corona, L.; Owens, F. and Plascencia, A., 2011. Comparative effects of processing methods on the feeding value of maize in feedlot cattle. Nutri. Res. Revi. Vol. 24, pp: 183-190.
44
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین ترکیب شیمیایی، فراسنجه های تولید گاز و قابلیت هضم انواع گیاهان خودرو در شرایط آزمایشگاهی
این پژوهش به منظور تعیین ترکیب شیمیایی، فراسنجه های تولید گاز و قابلیت هضم برونتنی گیاهان خودروی قیاق (Echinochola crus-gali)، تاج خروس (Portulaca oleracea)، سلمه (Sorghum halepense)، سوروف (Amaranthus retroflexus)، پنجه مرغی (Chenopodium album) و خرفه (Cynodon dactylon) در قالب طرح کاملاً تصادفی انجام شد. گیاهان مورد مطالعه در مرحله بلوغ از منطقه گنبد کاووس جمع آوری شدند. نتایج نشان داد که در بین گونه های مختلف، از نظر ترکیب شیمیایی اختلاف وجود دارد (0/05>P). گیاه خرفه از نظر مقدار خاکستر (26/54 درصد) و پروتئین خام (18/91 درصد) بالاترین و از نظر الیاف نامحلول در شوینده خنثی (18 درصد) پایین ترین مقدار را داشت. بالاترین مقدار الیاف نامحلول در شوینده خنثی (66 درصد) و فنل کل (15/5 درصد) و پایین ترین مقدار خاکستر (9/75 درصد) مربوط به قیاق بود. بین تیمارهای آزمایشی از نظر پتانسیل و ثابت نرخ تولید گاز اختلاف معنیداری وجود داشت (0/05>P)؛ به طوری که خرفه و سلمه به ترتیب پایین ترین و بالاترین پتانسیل تولید گاز را دارا بودند (131/7 و 255/7 میلی لیتر در گرم ماده خشک). بالاترین و پایین ترین غلظت اسیدهای چرب کوتاه زنجیر به ترتیب مربوط به گیاهان خودروی سوروف و سلمه بود (0/171 و 0/413 میلی مول به ازاء گرم ماده خشک). بالاترین و پایین ترین میزان قابلیت هضم ماده خشک و ماده آلی، تولید توده پروتئین میکروبی و بازده تولید پروتئین میکروبی به ترتیب مربوط به خرفه و قیاق بود. نتایج نشان داد که علف های خودروی مورد مطالعه در این آزمایش، از پتانسیل غذایی متفاوت برخوردار بودند، ولی در عین حال، این گیاهان قابلیت استفاده در تغذیه دام را دارا می باشند.
http://www.aejournal.ir/article_110281_29f3465ae41ea4d83eaa151fa31a951c.pdf
2020-09-22
51
58
10.22034/aej.2020.110281
ترکیب شیمیایی
قابلیت هضم
تولید گاز
علف های خودرو
جواد
بیات کوهسار
javad_bayat@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
LEAD_AUTHOR
فرشته
مقصودلو
fereshtehmn@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
AUTHOR
علی محمد
خوجه
alimohammad@yahoo.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
AUTHOR
ارزانی،ح.،1387. مطالعه کیفیت علوفه. گزارش طرح پژوهشی تعیین سیاست های اقتصادی واحدهای اجتماعی پایه مرتعداری. دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران. 78 صفحه.
1
تربتی نژاد، ن.م.؛ چاییچی، م.د. و شریفی، س.، 1380. بررسی اثر کود نیتروژن بر کیفیت سیلوی سه رقم سورگوم علوفه ای. علوم و صنایع کشاورزی. دوره 9، شماره 2، صفحات 205 تا 220.
2
Abd El-Aziz, H.A.; Sobhy, M.H.; Ahmed, K.A.; Abd El hameed, A.K.; Rahman, Z.A. and Hassan, W.A., 2014. Chemical and remedial effects of purslane (Portulaca oleracea) plant. Journal of Life Science. Vol. 11, pp: 31-42.
3
Almasoud, A.G. and Salem, E., 2014. Nutritional Quality of Purslane and its crackers. Middle East Journal of Applied Sciences. Vol. 4 No. 3, pp: 448-454.
4
AOAC. 1990. Official Methods of Analysis 15th edn. Association of Official Analytical Chemists Washington DC. USA.
5
Beuvink, J.M.W. and Spoelstra, S.F., 1992. Interactions between substrate fermentation end-products buffering systems and gas production upon fermentation of different carbohydrates by mixed rumen microorganisms in vitro. Appl Microbiol Biotechnol. Vol. 37, pp: 505-509.
6
Blackshaw, R.E., 2005. Nitrogen fertilizer manure and compost effects on weed growth and competition with spring wheat. Agronomy Journal. Vol. 97, pp: 1612-1621.
7
Blummel, M. and Bullerdieck, P., 1997. The need to complement gas production measurements with residue determination from in Sacco degradability to improve the prediction of voluntary intake of hays. Animal Science. Vol. 64, pp: 71-75.
8
Blummel, M. and Orscov, E.R., 1993. Comparsion of in vitro gas production and nylon bag degradability of roughages in predicting feed intake in cattle. Animal Feed Science and Technology. Vol. 40, pp: 109-119.
9
Burt, S., 2004. Essential oils their antibacterial properties and potential applications in foods a review. International Journal of Food Microbiology. Vol. 94, pp: 223-253.
10
Castelán, O.J.; Estrada, L.; Carretero, A.; Vieira, N.; Martinez, S. and Cárdenas, C., 2003. Degradation characteristics of maize weeds used as forage in smallholder maize-livestock production systems of central México in different growing periods. Tropical and Subtropical Agroecosystems. Vol. 3 pp: 115-119.
11
Di-Tomasa, J.M., 1995. Approach for improvement crop competition through the manipulation of fertilization strategies. Weed Science. Vol. 43, pp: 491-497.
12
Faller, A.L.K. and Fialho, E., 2009. The antioxidant capacity and polyphenol content of organic and conventional retail vegetables after domestic coking. Food Research International. Vol. 42, pp: 210-215.
13
Getachew, G.; Makkar, H.P.S. and Becker, K., 2002. Tropical browses: contents of phenolic compounds, in vitro gas production and stoichiometric relationship between short chain fatty acid and in vitro gas production. The Journal of Agricultural Science. Camb. Vol. 139, pp: 341-352.
14
Hosseini-Nezhad, Z.; Yousef-Elahi, M. and Fazaeli, H., 2012. Determination of nutritive value of five halophyte in salt desert lands of Khorasan province. Journal of Pajouhesh and Sazandegi. Vol. 55, pp: 2-5.
15
Karabulut, A.; Ozgur Ozkan, C.; Kamalak, A. and Canbolat, O., 2006. Comparison of the nutritive value of a native Turkish forages tumbleweed hay (Gundelia tournefortii L) wheat straw and alfalfa hay using in situ and in vitro measurements with sheep. Archives latinoamericanos de producción animal. Vol. 14, No. 3, pp: 78-83.
16
Larbi, A.; Smith, J. W.; Kurdi, I.O.; Adeknle, I.O.; Rajj, A.M. and Ladipo, D.O., 1998. Chemical composition rumen degradation and gas production characteristics of some multipurpose fodder trees and shrubs during wet and dry seasons in the humid tropics. Animal Feed Science and Technology. Vol. 72, pp: 81-96.
17
Lim, Y.Y. and Quah, E.P.L., 2007. Antioxidant properties of different cultivars of Portula caoleracea. Food Chemistry. Vol. 103, pp: 734-740.
18
Makkar, H.P.S., 2004. Recent advances in the in vitro gas method for evaluation of nutriational quality of feed resources Food and Agriculture Organization of the United Nations Rome Italy. Vol. 33, pp: 170-184.
19
Makkar, H.P.S., 2005. In vitro gas methods for evaluation of feeds containing phytochemicals. Animal Feed Science and Technology. Vol. 123, No. 1, pp: 291-302.
20
Makkar, H.P.S.; Blümmel, M. and Becker, K., 1995. Formation of complexes between polyvinyl pyrrolidone and polyethylene glycol with tannins and their implications in gas production and true digestibility in in vitro techniques. Vol. 73, pp: 897-913.
21
Malick, C.P. and Singh, M.B., 1980. In plant enzymology and histo enzymologhy Kalyani Publishers New Dehli 1980. 286 p.
22
Manzoor, M.N.; Sultan, J.I.; Nisa, M.U. and Bilal, M.Q., 2013. Nutritive evaluation and in situ digestibility of irrigated grasses. The Journal of Animal and Plant Sciences. Vol. 23, No. 5, pp: 1223-1227.
23
Mcsweeny, C.S.; Palmer, B.; McNeill, D.M. and Krause, D.O., 2001. Microbial interaction with tannin nutritional consequences for ruminants. Animal Feed Science and Technology. Vol. 91, pp: 83-93.
24
Menke, K.H. and Steingass, H., 1988. Estimation of the energetic feed value obtained from chemical analysis and in vitro gas production using rumen fluid. Journal of Animal Research Develop. 28 p.
25
Menke, K.H.; Raab, L.; Salewski, A.; Steingass, H.; Fritz, D. and Schneider, W., 1979. The estimation of the digestibility and metabolisable energy content of ruminant feeding stuffs from the gas production when they are incubated with rumen liquor. The Journal of Agricultural Science. Vol. 93, pp: 217-222.
26
Minson, D.J., 1990. Forage in ruminnt nutrition Academic Press Inc San Diego CA USA.
27
Norman, H.C.; Friend, C.; Masters, D.G.; Rintoul, A.J.; Dynes, R.A. and Williams, I.H., 2004. Variation within and between two saltbush species in plant composition and subsequent selection by sheep. Australian Journal of Agriculture Research. Vol. 55, pp: 999-1007.
28
Norton, B.W., 2003. The Nutritive value of tree legumes. http://www.fao.org/ag/AGPC/doc/ Publicat/Gutt-shel/x5556 e0j.htm. pp: 1-10.
29
Oliveira, I.; Valentão, P.; Lopes, R.; Andrade, P.; Bento, A. and Pereira, J.A., 2009. Phytochemical characterization and radical scavenging activity of Portulaca oleraceae L leaves and stems. Microchemical Journal. Vol. 92, pp: 129-134.
30
Olivera, M.P., 1998. Use of in vitro gas production technique to assess the contribution of both soluble and insoluble fraction on the nutritive value of forage A thesis submitted to the Univercity of Aberdeen Scotland in partial fulfillment of the degree of Master of Science in Animal Nutrition.
31
Ørskov, E.R. and McDonald, I., 1979. The estimation of protein degradability in the rumen from incubation Measurements weighted according to rate of passage. Journal of Agriculture Science. Vol. 92, pp: 499-503.
32
SAS. 2003. SAS users Guide Statistic Cray NC SAS Institute INC.
33
Saunders, R.M. and Becker, R., 1984. Amaranthus A potential food and feed resource In Adv Cereal sci. Tech. Vol. 6, pp: 357-396.
34
Singh, H.P.; Batish, D.R. and Kohli, R.K., 2003. Allelopathic interactions and allelochemicals new possibilities for sustainable weed management Critical Reviews in Plant Sciences. Vol. 22, No. 3 and 4, pp: 239-311.
35
Sommart, K.; Parker, D.S.; Rowlinson, P. and Wanapat, M., 2000. Fermentation characteristics and microbial protein synthesis in an in vitro system using cassava rice straw and dried ruzi grass as substrates. Asian-Aust Journal Animal Science. Vol. 13, pp: 1084-1093.
36
Thayumanavan, B. and Sadasivam, S., 1984. Physicochemical basis for the preferential uses of certain rice varieties. Qualities Plant Foods for Human Nutrition. Vol. 34, 253 p.
37
Theodorou, M.K.; Williams, B.A.; Dhanoa, M.S.; McAllan, A.B. and France, J., 1994. A simple gas production method using a pressure transducer to determine the fermentation kinetics of ruminant feeds. Animal Feed Science and Technology. Vol. 48, pp: 185-197.
38
Van Soest, P.J.; Robertson, J.B. and Lewis, B.A., 1991. Methods for dietary fiber neutral detergent fiber and non-starch polysaccharides in relation to animal nutrition. Journal of Dairy Science. Vol. 74, pp: 3583-3597.
39
Weber, L.; Ehubbard Putnam, D.; Nelson, L. and Lehman, J., 1988. Amaranth grain Production guide Rodale Pres Inc Emmaus. PH and American Amaranth Institute, Bricelyn, M. N. In vitro gas production using rumen fluid. Animal research and development. Vol. 28 pp: 7-55.
40
ORIGINAL_ARTICLE
مدلسازی اثرات تغییر اقلیم بر پراکنش جغرافیایی گوسفند وحشی در استان لرستان
تخریب و تکه تکه شدگی زیستگاه به عنوان مهم ترین عامل تهدید کننده جمعیتهای در خطر حیات وحش شناخته می شود و ممکن است تغییر اقلیم منجر به افزایش شدت این پدیده شود. هدف از پژوهش حاضر، مدل سازی مطلوبیت زیستگاه گوسفند وحشی در استان لرستان و بررسی پیامدهای تغییر اقلیم بر زیستگاه های شناسایی شده است. به منظور پیش بینی پراکنش این گونه در شرایط حال حاضر و آینده از رویکرد مدل سازی اجماعی با استفاده از شش مدل پراکنش گونه ای استفاده شد. براساس مدل های مورد استفاده، در حدود 7/4 درصد (2093/98 کیلومتر مربع) از ناحیه مورد مطالعه به عنوان زیستگاه مطلوب پیش بینی شد. متغیرهای پوشش اراضی، تغییرات فصلی دما، فاصله تا چشمه، ردپای انسان و فاصله تا گریزگاه بالاترین مشارکت (80 درصد) را در اجرای مدل داشتند. یافته ها نشان میدهد که 62/14 درصد (4/5 RCP) تا 76/97 درصد (8/5 RCP) از زیستگاههای مطلوب گوسفند وحشی تا سال 2050 به واسطه تغییر اقلیم تحت چهار سناریوی افزایش گازهای گلخانه ای و مدل گردش عمومی BCC-CSM1-1 از دست خواهد رفت. در مقابل، در همین دوره زمانی در حدود 5/89 درصد (8/5 RCP) تا 17/01 درصد (4/5 RCP) به زیستگاه های مطلوب اضافه خواهد شد. یافته های این پژوهش اطلاعات سودمندی را برای طرح ریزی حفاظتی به منظور حفاظت و بازسازی جمعیت های گوسفند وحشی فراهم می سازد.
http://www.aejournal.ir/article_110302_cdcfe709b051c677e44e217d2a1407ab.pdf
2020-09-22
59
68
10.22034/aej.2020.110302
گونههای تهدید شده
تخریب زیستگاه
تغییر اقلیم
مدلسازی پراکنش گونهای
حفاظت
محمدرضا
اشرف زاده
ashrafzadeh59@gmail.com
1
گروه شیلات و محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و علوم زمین، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران
LEAD_AUTHOR
علی اصغر
نقی پور
aa.naghipour@sku.ac.ir
2
گروه مهندسی طبیعت، دانشکده منابع طبیعی و علوم زمین، دانشگاه شهرکرد، شهرکرد، ایران
AUTHOR
مریم
حیدریان
ma_haidarian@yahoo.com
3
گروه مرتع و آبخیزداری، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران
AUTHOR
ایمان
میرزایی
iman_a2004@yahoo.com
4
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و علوم زمین، دانشگاه کاشان، کاشان، ایران
AUTHOR
اشرف زاده، م. و نظریان، ع.، 1396. مدل سازی زیستگاه مطلوب کبک دری (Tetraogallus caspius) به عنوان یک گونة شاخص مناطق مرتفع کوهستانی. نشریه محیط زیست طبیعی. سال 70، شماره 4، صفحات 745 تا 756.
1
امیری یاراحمدی، ب.؛ سپهوند، ن. و قوامی، م.، 1393. نقش آب و هوا و تنوع اقلیمی در فرایند توسعه گردشگری استان لرستان. همایش بین المللی علمی راهبردی توسعه گردشگری جمهوری اسلامی ایران چالش ها و چشم اندازها، پژوهشگاه گردشگری جهاد دانشگاهی، صفحات 1 تا 8.
2
درویش صفت، ع.ا.، 1385. اطلس مناطق حفاظت شده ایران. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. 157 صفحه.
3
رم یاز، م.؛ نادری، ن.؛ کرمی، پ. و بهنام، غ.، 1396. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه پاییزه و زمستانه گوسفند وحشی(Ovis orientalis) در منطقه حفاظت شده پرور براساس روش حداکثر آنتروپی بیشینه (MaxEnt). فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 2، صفحات 17 تا 24.
4
سازمان زمین شناسی و اکتشافات معدنی. 1393. گزارش پتانسیلها و ذخایر معدنی استان لرستان. 75 صفحه.
5
شمس اسفندآباد، ب.؛ کرمی، م. و همامی، م.، 1389. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه، رویکردی نوین برای برنامه ریزی حفاظت از تنوع زیستی. همایش ملی بررسی تهدیدها و عوامل تخریب تنوع زیستی در منطقه زاگرس مرکزی، دانشگاه صنعتی اصفهان.
6
ضیایی. ه. 1387. راهنمای صحرایی پستانداران ایران. انتشارت کانون آشنایی با حیات وحش. 420 صفحه.
7
فلاح باقری، ف.؛ کابلی، م. و فراشی، آ.، 1388. ارزیابی زیستگاه قوچ و میش اصفهانی Ovis orientalis isfahanica در پارک ملی کلاه قاضی با روش ENFA. همایش ژئوماتیک. 8 صفحه.
8
کرمانی القریشی، ز.؛ علی محمدی سراب، ع. و کیابی، ب.، 1389. عوامل بوم شناختی موثر بر پراکنش گوسفند وحشی در پارک های ملی خجیر و سرخه حصار. نشریه محیط زیست طبیعی. سال 63، شماره 4، صفحات 359 تا 372.
9
گلجانی، ر.، 1389. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه پاییزه گوسفند وحشی البرز مرکزی در مجموعه حفاظت شده جاجرود. محیط زیست طبیعی. سال 63، صفحات 173 تا 186.
10
ماهینی، ع.، 1371. ارزیابی زیستگاه مجموعه حفاظت شده توران با تاکید بر تصاویر ماهواره ای. پایان نامه کارشناسی ارشد محیط زیست. دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران.
11
ملکی نجف آبادی، س.، 1386. تهیه پارامترهای زیستگاهی قوچ و میش وحشی اصفهانی در پناهگاه حیات وحش موته با استفاده از سامانه اطلاعات جغرافیایی. پایان نامه کارشناسی ارشد محیط زیست. دانشگاه صنعتی اصفهان.
12
ملکی نجف آبادی، س.؛ همامی، م. و ماهینی، ع.، 1389. تعیین مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش اصفهانی (Ovis orientalis isphahanica) در پناهگاه حیات وحش موته با استفاده از روش تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی. نشریه محیط زیست طبیعی. سال 63، صفحات 279 تا 290.
13
نقیب زاده، ع.؛ رضایی، ن.؛ سرهنگ زاده، ج. و سیدی، ن.، 1397. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه گونه گوسفند وحشی در پناهگاه حیات وحش بوروئیه استان یزد با استفاده از روش حداکثر آنتروپی (MaxEnt). فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 10، شماره 4، صفحات 75 تا 82.
14
Allouche, O.; Tsoar, A. and Kadmon, R., 2006. Assessing the accuracy of species distribution models: prevalence, kappa and the true skill statistic (TSS). Journal of Applied Ecology. Vol. 43, No. 6, pp: 1223-1232.
15
Aryal, A.; Brunton, D. and Raubenheimer, D., 2013. Habitat assessment for the translocation of blue sheep to maintain a viable snow leopard population in the Mt Everest Region, Nepal. Zoology and Ecology. Vol. 23, No. 1, pp: 66-82.
16
Ashrafzadeh, M.R.; Naghipour, A.A.; Haidarian, M. and Khorozyan, I., 2019a. Modeling the response of an endangered flagship predator to climate change in Iran. Mammal Research. Vol. 64, No. 1, pp: 1-13.
17
Ashrafzadeh, M.R.; Naghipour, A.A.; Haidarian, M.; Kusza, S. and Pilliod, D.S., 2019b. Effects of climate change on habitat and connectivity for populations of a vulnerable, endemic salamander in Iran. Global Ecology and Conservation. Vol. 19, pp: e00637.
18
Bashari, H. and Hemami, M.R., 2013. A predictive diagnostic model for wild sheep (Ovis orientalis) habitat suitability in Iran. Journal for Nature Conservation. Vol. 21, No. 5, pp: 319-325.
19
Cardenas, A.S.; Cardenas, I.G.; Dmaz, S.; Tessaro P.G. and Gallina, S., 2001. The variables of physical habitat Cirelli, M. T. (2002). Legal trends in wildlife management. In FAO legislative study. Selection by the desert bighorn sheep (Ovis canadensis weemsi) in the Sierra del Mechudo, Baja California Sur, Mexico" Journal of Arid Environments. Vol. 49, pp: 357-374.
20
Chen, I.C.; Hill, J.K.; Ohlemüller, R.; Roy, D.B. and Thomas, C.D., 2011. Rapid range shifts of species associated with high levels of climate warming. Science. Vol. 333, No. 6045, pp: 1024-1026.
21
Doswald, N.; Willis, S.G.; Collingham, Y.C.; Pain, D.J.; Green, R.E. and Huntley, B., 2009. Potential impacts of climatic change on the breeding and nonbreeding ranges and migration distance of European Sylvia warblers. Journal of Biogeography. Vol. 36, pp: 1194-1208.
22
Ebrahimi, A.; Farashi, A. and Rashki, A., 2017. Habitat suitability of Persian leopard (Panthera pardus saxicolor) in Iran in future. Environmental earth sciences. Vol. 76, No. 20, pp: 697.
23
Favilli, F.; Hoffmann, C.; Ravazzoli, E. and Streifeneder, T., 2013. BioRegio Carpathians: Advanced tools and methodologies adopted GIS Model Design for deriving ecological corridors. European Academy of Bolzano: Institute for Regional Development and Location Management. pp: 1-54.
24
Giuseppe, P. and Luigi, M., 2016. Combining multiple tools to provide realistic potential distributions for the mouflon in Sardinia: species distribution models, spatial pattern analysis and circuit theory. Hystrix, the Italian Journal of Mammalogy. pp: 1-7.
25
Granados, A. and Brodie, J.F., 2016. Persistence of tropical Asian ungulates in the face of hunting and climate change. In: Sankaran, M., Ahrestani, F. (Eds.), The Ecology of Large Herbivores in South and Southeast Asia. Springer-Verlag, Berlin, Germany. pp: 223-235.
26
Haynes, M.A.; Kung, K.S.; Brandt, J.S.; Yongping, Y.; Waller, D.M., 2014. Accelerated climate change and its potential impact on yak herding livelihoods in the eastern Tibetan plateau. Climatic Change. Vol. 123, pp: 147-160.
27
Hilty, J.A.; Lidicker, W.Z. and Merenlender, A., 2012. Corridor ecology: the science and practice of linking landscapes for biodiversity conservation. Island Press. 344 p.
28
Hole, D.G.; Willis, S.G.; Pain, D.J.; Fishpool, L.D.; Butchart, S.H.M.; Collingham, Y.C. and Huntley, B., 2009. Projected impacts of climate change on a continent wide protected area network. Ecology Letters. Vol. 12, pp: 420-431.
29
Hosseini, S.M.; Fazilati, M.; Moulavi, F.; Foruzanfar, M.; Hajian, M. and Abedi, P., 2009. Reproductive potential of domestic Ovis aries for preservation of threatened Ovis orientalis isphahanica: In vitro and in vivo studies. European Journal of Wildlife Research. Vol. 55, pp: 239-246.
30
IPCC (Intergovernmental Panel on Climate Change). 2007. Climate Change 2007: IPCC Fourth Assessment Report. Cambridge, UK: Cambridge University Press. 112 p.
31
Jetz, W.; Wilcove, D.S. and Dobson, A.P., 2007. Projected impacts of climate and landuse change on the global diversity of birds. PLoS One. Vol. 5, pp: 1210-1219.
32
Kanellopoulos, N.; Mertzanis, G.; Korakis, G. and Panagiotopoulou, M., 2006. Selective habitat uses by brown bear (Ursus arctos L.) in northern Pindos, Greece. Journal of Biological Research. Vol. 5, pp: 23-33.
33
Khan, B.; Ablimit, A.; Khan, G.; Jasra, A.W.; Ali, H.; Ali, R.; Ahmad, E. and Ismail, M., 2016. Abundance, distribution and conservation status of Siberian ibex, Marco Polo and Blue sheep in Karakoram-Pamir mountain area. Journal of King Saud University-Science. Vol. 28, No. 3, pp: 216-225.
34
Lamsal, P.; Kumar, L.; Aryal, A. and Atreya, K., 2018. Future climate and habitat distribution of Himalayan Musk Deer (Moschus chrysogaster). Ecological Informatics. Vol. 44, pp: 101-108.
35
Luo, Z.; Jiang, Z. and Tang, S., 2015. Impacts of climate change on distributions and diversity of ungulates on the Tibetan Plateau. Ecological Applications. Vol. 25, No. 1, pp: 24-38.
36
Malekpoor, H.; Morovati, M.; Tazeh, M. and Taghizadeh, R., 2018. Evaluating the desirable habitat of Ovis orientalis using the MaxEnt model (Case study: Tang Sayyad Protected Area). Animal Environment. Vol. 10, No. 4, pp: 45-54.
37
Manne, L.L.; Brooks, T.M. and Pimm, S.L., 1999. Relative risk of extinction of passerine birds on continents and islands. Nature. Vol. 399, pp: 258-261.
38
Milanovich, J.R.; Peterman, W.E.; Nibbelink, N.P. and Maerz, J.C., 2010. Projected loss of a salamander diversity hotspot as a consequence of projected global climate change. PLoS One. Vol. 5, pp: e12189.
39
Mohammadi, S.; Ebrahimi, E.; Moghadam, M.S. and Bosso, L., 2019. Modelling current and future potential distributions of two desert jerboas under climate change in Iran. Ecological Informatics. Vol. 52, pp: 7-13.
40
Pettorelli, N.; Pelletier, F.; von Hardenberg, A.; Festa Bianchet, M. and Coté, S.D., 2007. Early onset of vegetation growth vs. rapid green up: Impacts on juvenile mountain ungulates. Ecology. Vol. 88, pp: 381-390.
41
R Development Core Team. 2014. R: a language and environment for statistical computing. R Foundation for Statistical Computing, Vienna.
42
Ripple, W.J.; Estes, J.A.; Beschta, R.L.; Wilmers, C.C.; Ritchie, E.G.; Hebblewhite, M.; Berger, J.; Elmhagen, B.; Letnic, M.; Nelson, M.P. and Schmitz, O.J., 2014. Status and ecological effects of the world’s largest carnivores. Science. Vol. 343, No. 6167, pp: 124-148.
43
Salas, E.A.L.; Seamster, V.A.; Boykin, K.G.; Harings, N.M. and Dixon, K.W., 2017a. Modeling the impacts of climate change on Species of Concern (birds) in South Central USA based on bioclimatic variables. AIMS Environmental Science. Vol. 4, pp: 358-385.
44
Salas, E.A.L.; Valdez, R. and Michel, S., 2017b. Summer and winter habitat suitability of Marco Polo argali in southeastern Tajikistan: A modeling approach. Heliyon. Vol. 3, No. 11, pp: e00445.
45
Salas, E.A.L.; Valdez, R.; Michel, S. and Boykin, K.G., 2018. Habitat assessment of Marco Polo sheep (Ovis ammon polii) in Eastern Tajikistan: Modeling the effects of climate change. Ecology and evolution. Vol. 8, No. 10, pp: 5124-5138.
46
Sanderson, E.W.; Jaiteh, M.; Levy, M.A.; Redford, K.H.; Wannebo, A.V. and Woolmer, G., 2002. The human footprint and the last of the wild: the human footprint is a global map of human influence on the land surface, which suggests that human beings are stewards of nature, whether we like it or not. AIBS Bulletin. Vol. 52, No. 10, pp: 891-904.
47
Sexton, J.P.; McIntyre, P.J.; Angert, A.L. and Rice, K.J., 2009. Evolution and ecology of species range limits. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics. Vol. 40, pp: 415-436.
48
St-Louis, A. and Côté, S.D., 2014. Resource selection in a high-altitude rangeland equid, the kiang (Equus kiang): influence of forage abundance and quality at multiple spatial scales. Canadian Journal of Zoology. Vol. 92, No. 3, pp: 239-249.
49
Su, J.; Aryal, A.; Nan, Z. and Ji, W., 2015. Climate change induced range expansion of a subterranean rodent: Implications for rangeland management in Qinghai-Tibetan Plateau. PloS One. Vol. 10, No. 9, pp: e0138969.
50
Thuiller, W.; Georges, D.; Engler, R.; Breiner, F.; Georges, M.D. and Thuiller, C.W., 2016. Package ‘biomod2’. https://cran.r-project.org/package=biomod2.
51
Valdez, R., 2008. IUCN Red List of Threatened Species. Version 2011.2. Retrieved from: http://www.iucnredlist.org/apps/redlist/search Accessed 22.03.12.
52
Valdez, R.; Nadler, C.F. and Bunch, T.D., 1978. Evolution of wild sheep in Iran. Evolution. Vol. 32, pp: 56-72.
53
Van Beest, F.M. and Milner, J.M., 2013. Behavioural responses to thermal conditions affect seasonal mass change in a heat-sensitive northern ungulate. PloS One. Vol. 8, No. 6, pp: e65972.
54
Warren, D.L.; Matzke, N.J. and Iglesias, T.L., 2020. Evaluating presence‐only species distribution models with discrimination accuracy is uninformative for many applications. Journal of Biogeography, 47, pp: 167-180.
55
White, K.S.; Gregovich, D.P. and Levi, T., 2018. Projecting the future of an alpine ungulate under climate change scenarios. Global change biology. Vol. 24, No. 3, pp: 1136-1149.
56
Yousefi, M.; Ahmadi, M.; Nourani, E.; Rezaei, A.; Kafash, A.; Khani, A.; Sehhatisabet, M.E.; Adibi, M.A.; Goudarzi, F. and Kaboli, M., 2017. Habitat suitability and impacts of climate change on the distribution of wintering population of Asian Houbara Bustard Chlamydotis macqueenii in Iran. Bird Conservation International. Vol. 27, No. 2, pp: 294-304.
57
Zuur, A.F.; Ieno, E.N. and Elphick, C.S., 2010. A protocol for data exploration to avoid common statistical problems. Methods in ecology and evolution. Vol. 1, No. 1, pp: 3-14.
58
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثرات مواجهه کوتاهمدت شرایط تنش حرارتی-رطوبتی بر رشد و نمو جنین در موش های آزمایشگاهی باردار
تنش های حرارتی-رطوبتی از مهم ترین عوامل محیطی موثر بر رشد جنین و سلامت مادران باردار است و مطالعات در این زمینه محدود بوده اند. هدف این پژوهش بررسی اثرات مواجهه کوتاه مدت در برابر تنش های حرارتی-رطوبتی در قالب شاخص THI بر رشد و نمو جنین در موش می باشد و به این منظور از مدل های حیوانی (موش NMRI) استفاده شده است. در مطالعه حاضر موش های NMRI با سن 7 تا 8 هفته باردار در طول دوره دوم بارداری استفاده شده است. روزانه به صورت کوتاه مدت (3، 5، 8، 10 و 15 دقیقه) و در بازه زمانی 1 هفته در برابر تنشهای حرارتی-رطوبتی در محفظه طراحی شده قرار گرفتند. دوره های قرارگیری مطابق با نقاط رشد و تکامل جنین انسان طراحی شده است. مواجهه با تنش های حرارتی-رطوبتی در دوره دوم (روز بارداری: 14-6/5) بارداری در مدت زمان 7 روز، افزایش میزان مرگ و میر مادران، کاهش وزن قد جنین و وزن جفت را نسبت به گروه شاهد نشان می دهد، این افزایش در سطح معنیداری (0/01 >p-value) مورد آزمون قرار گرفت. هم چنین با افزایش سطح تنش (حرارت-رطوبتی) در سطوح مختلف شاخص، ناهنجاری های جنینی (اگزوهپاتیک، بدشکلی صورت، بدن C شکل، نقایص ساختاری گوش، همانژیوم و چسبندگی اندام حرکتی) افزایش نشان داده است. آزمون t دو نمونه مستقل و ANOVA معنی داری موارد فوق را در سطح (0/01 >p-value) تایید نموده اند. نتایج این پژوهش می تواند در تدوین برنامه های مراقبتی، درمانی و آموزش مادران باردار موثر بوده و جهت پایش تنش های حرارتی-رطوبتی و طراحی سیستم های هشدار دهنده مورد استفاده قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_110333_fa05969043e439bf8eaa25193be9178f.pdf
2020-09-22
69
76
10.22034/aej.2020.110333
تنشهای حرارتی-رطوبتی
ناهنجاری های جنین
THI
مواجهه
فاطمه
میوانه
fmayvaneh@yahoo.com
1
گروه اقلیمشناسی، دانشکده جغرافیا و علوم محیطی، دانشگاه حکیم سبزواری، سبزوار، ایران
AUTHOR
علیرضا
انتظاری
entezari@hsu.ac.ir
2
گروه اقلیمشناسی، دانشکده جغرافیا و علوم محیطی، دانشگاه حکیم سبزواری، سبزوار، ایران
LEAD_AUTHOR
فاطمه
صادقی فر
f.sadeghifar@hsu.ac.ir
3
گروه زیستشناسی، دانشکده علوم پایه،دانشگاه حکیم سبزواری، سبزوار، ایران
AUTHOR
محمد
باعقیده
mbaaghideh2005@yahoo.com
4
گروه اقلیمشناسی، دانشکده جغرافیا و علوم محیطی، دانشگاه حکیم سبزواری، سبزوار، ایران
AUTHOR
آزاده
عتباتی
az.atabati80@gmail.com
5
گروه علوم و مهندسی محیطزیست، دانشکده جغرافیا و علوم محیطی، دانشگاه حکیم سبزواری، سبزوار، ایران
AUTHOR
Arens, E.A.; Gonzalez, R. and Berglund, L., 1986. Thermal comfort under an extended range of environmental conditions. ASHRAE Transactions. 92 p.
1
Beltran, A.; Wu, J. and Laurent, O., 2014. Associations of meteorology with adverse pregnancy outcomes: a systematic review of preeclampsia, preterm birth and birth weight. International journal of environmental research and public health. Vol. 11, No. 1, pp: 91-172.
2
Bianca, W., 1962. Relative importance of dry-and wet-bulb temperatures in causing heat stress in cattle. Nature. Vol. 195, pp: 251-252.
3
Bianchi-Demicheli, F.; Lüdicke, F.; Spinedi, F.; Major, A.L.; Kulier, R.; Campana, A. and Gyr, T., 2001. Association between weather conditions and the incidence of emergency gynecological consultations. Gynecologic and Obstetric Investigation. Vol. 51, No. 1, pp: 55-59.
4
Blazejczyk, K.; Epstein, Y.; Jendritzky, G.; Staiger, H. and Tinz, B., 2012. Comparison of UTCI to selected thermal indices. International Journal of Biometeorology. Vol. 56, No. 3, pp: 515-535.
5
Bohmanova, J.; Misztal, I. and Cole, J., 2007. Temperature-humidity indices as indicators of milk production losses due to heat stress. Journal of Dairy Science. Vol. 90, No. 4, pp: 1947-1956.
6
Bruckner, T.A.; Modin, B. and Vågerö, D., 2014. Cold ambient temperature in utero and birth outcomes in Uppsala, Sweden, 1915–1929. Annals of epidemiology. Vol. 24, No. 2, pp: 116-121.
7
Butler, A.S. and Behrman, R.E., 2007. Preterm birth: causes, consequences, and prevention: National Academies Press.
8
Cargill, B. and Stewart, R., 1966. Effect of humidity on total heat and total vapor dissipation of Holstein cows. Trans. ASAE. Vol. 9, No. 5, pp: 702-706.
9
Council, N.R., 1971. A guide to environmental research on animals: National Academies.
10
Czeizel, E. and Elek, E., 1967. Seasonal changes in the frequency of fetal damages and fertility. Gynecologic and Obstetric Investigation. Vol. 164, No. 2, pp: 89-95.
11
da Silva, R.G. and Maia, A.S.C., 2012. Principles of animal biometeorology (Vol. 2): Springer Science & Business Media.
12
da Silva, R.G. and Maia, A.S.C., 2013. Thermal stress indexes Principles of Animal Biometeorology (pp: 207-229): Springer.
13
Dłuski, D.; Mierzyński, R.; Poniedziałek-Czajkowska, E. and Leszczyńska-Gorzelak, B., 2018. Adverse pregnancy outcomes and inherited thrombophilia. Journal of perinatal medicine. Vol. 46, No. 4, pp: 411-417.
14
Dulskiene, V. and Maroziene, L., 2001. Impact on environmental factors on the reproductive system and fetal development. Medicina (Kaunas, Lithuania). Vol. 38, No. 11, pp: 1072-1077.
15
Frederiksen, L.E.; Ernst, A.; Brix, N.; Lauridsen, L.L.B.; Roos, L.; Ramlau-Hansen, C.H. and Ekelund, C.K., 2018. Risk of adverse pregnancy outcomes at advanced maternal age. Obstetrics & Gynecology. Vol. 131, No. 3, pp: 457-463.
16
Gosling, S.N.; Bryce, E.K.; Dixon, P.G.; Gabriel, K.M.; Gosling, E.Y.; Hanes, J.M. and Muthers, S., 2014. A glossary for biometeorology. International journal of biometeorology. Vol. 58, No. 2, pp: 277-308.
17
Hamid, H.Y.; Abu Bakar Zakaria, M.Z.; Yong Meng, G.; Haron, A.W. and Mohamed Mustapha, N., 2012. Effects of elevated ambient temperature on reproductive outcomes and offspring growth depend on exposure time. The Scientific World Journal.
18
Jendritzky, G.; de Dear, R. and Havenith, G., 2012. UTCI, Why another thermal index? International Journal of Biometeorology. Vol. 56, No. 3, pp: 421-428.
19
Johnson, H.; Ragsdale, A.; Berry, I. and Shanklin, M., 1962. Effect of various temperature-humidity combinations on milk production of Holstein cattle. Research Bulletin. 791 p.
20
Johnson, H.; Ragsdale, A.; Berry, I. and Shanklin, M.D., 1963. Temperature-humidity effects including influence of acclimation in feed and water consumption of Holstein cattle. Missouri Agr. Exp. Sta. Res. Bul. 846 p.
21
Kántor, N. and Unger, J., 2011. The most problematic variable in the course of human-biometeorological comfort assessment the mean radiant temperature. Central European Journal of Geosciences. Vol. 3, No. 1, pp: 90-100.
22
Kramer, M.S., 2003. The epidemiology of adverse pregnancy outcomes: an overview. The Journal of nutrition. Vol. 133, No. 5, pp: 1592S-1596S.
23
Kyle, W., 1994. editor The human bioclimate of Hong Kong. Proceedings of the Contemporary Climatology Conference, Brno TISK LITERA, Brno.
24
Lajinian, S.; Hudson, S.; Applewhite, L.; Feldman, J. and Minkoff, H.L., 1997. An association between the heat humidity index and preterm labor and delivery: a preliminary analysis. American Journal of public health. Vol. 87, No. 7, pp: 1205-1207.
25
Lam, D.A. and Miron, J.A., 1996. The effects of temperature on human fertility. Demography. Vol. 33, No. 3, pp: 291-305.
26
Mahmoudi, P.; Tavousi, T.; Wereski, S. and Kamak, M.M., 2019. Comparative evaluation of sultry indices in the mid-south of Iran. Theoretical and Applied Climatology. pp: 1-13.
27
Malek, M., 2015. Pregnancy and Occupation. Occupational Medicine Quarterly Journal. Vol. 7, No. 2, pp: 85-97.
28
McDonald, A.; McDonald, J.C.; Armstrong, B.; Cherry, N.; Delorme, C.; D-Nolin, A. and Robert, D., 1987. Occupation and pregnancy outcome. Occupational and environmental medicine. Vol. 44, No. 8, pp: 521-526.
29
McGregor, G.R., 2012. Human biometeorology. Progress in Physical Geography. Vol. 36, No. 1, pp: 93-109.
30
Okun, M.L.; Roberts, J.M.; Marsland, A.L. and Hall, M., 2009. How disturbed sleep may be a risk factor for adverse pregnancy outcomes a hypothesis. Obstetrical & gynecological survey. Vol. 64, No. 4, pp: 273.
31
Parnell, A.M. and Rodgers, J.L., 1998. Seasonality of induced abortion in North Carolina. Journal of Biosocial Science. Vol. 30, No. 03, pp: 321-332.
32
Parsons, K., 2014. Human thermal environments: the effects of hot, moderate, and cold environments on human health, comfort, and performance: Crc Press.
33
Prentice, A.M.; Goldberg, G.; Davies, H.; Murgatroyd, P. and Scott, W., 1989. Energy-sparing adaptations in human pregnancy assessed by whole-body calorimetry. British Journal of Nutrition. Vol. 62, No. 0), pp: 5-22.
34
Ravagnolo, O.; Misztal, I. and Hoogenboom, G., 2000. Genetic component of heat stress in dairy cattle, development of heat index function. Journal of Dairy Science. Vol. 83, No. 9, pp: 2120-2125.
35
Ruff, C.B., 1994. Morphological adaptation to climate in modern and fossil hominids. American Journal of Physical Anthropology. Vol. 37, No. No. 19, pp: 65-107.
36
Sadler, T.W., 2011. Langman's medical embryology: Lippincott Williams & Wilkins.
37
Steadman, R.G., 1979. The assessment of sultriness. Part II: effects of wind, extra radiation and barometric pressure on apparent temperature. Journal of Applied Meteorology. Vol. 18, No. 7, pp: 874-885.
38
Talukder, S. and Haque, A., 2003. Frequency of abortion in different seasons and age groups. Mymensingh medical journal: MMJ. Vol. 12, No. 1, pp: 8-10.
39
Tan, K.; Karim, S.; Ratnam, S. and Kottegoda, S., 1984. Epidemiologic analysis of fetal death in utero in Singapore. International Journal of Gynecology & Obstetrics. Vol. 22, No. 3, pp: 181-188.
40
Thomas, P., 2004. Under the Weather: How Weather and Climate Affect Our Health: Summersdale Publishers LTD ROW.
41
Tselepidaki, I.; Asimakopoulos, D.; Katsouyanni, K.; Moustris, C.; Touloumi, G. and Pantazopoulou, A., 1995. The use of a complex thermohygrometric index in predicting adverse health effects in Athens. International journal of biometeorology. Vol. 38, No. 4, pp: 194-198.
42
Valencia-Barrera, R.; Comtois, P. and Fernández González, D., 2002. Bioclimatic indices as a tool in pollen forecasting. International journal of biometeorology. Vol. 46, No. 4, pp: 171-175.
43
Vitali, A.; Segnalini, M.; Bertocchi, L.; Bernabucci, U.; Nardone, A. and Lacetera, N., 2009. Seasonal pattern of mortality and relationships between mortality and temperature-humidity index in dairy cows. Journal of Dairy Science. Vol. 92, No. 8, pp: 3781-3790.
44
Wells, J.C. and Cole, T.J., 2002. Birth weight and environmental heat load: A between‐population analysis. American Journal of Physical Anthropology. Vol. 119, No. 3, pp: 276-282.
45
Yousef, M.K., 1985. Stress physiology in livestock. Volume I. Basic principles: CRC press.
46
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی متغییرهای محیطی تاثیرگذار بر توزیع گونه چکاوک گندم زار (Melanocorypha calandra) در منطقه داغ تنوع زیستی ایران-آناتولی
تغییرات اقلیمی، کاربری اراضی و عوامل انسانی از جمله محرک های اصلی تغییرات تنوع زیستی در قرن حاضر به شمار می روند. به گونه ای که اکثر مطالعات انجام گرفته در دهه های اخیر این واقعیت را در مطالعات خود نشان داده اند. زیستگاه های استپی از جمله زیستگاه هایی می باشند، که به شدت تحت تاثیر عوامل ذکر شده هستند. لذا مطالعه حاضر با هدف شناسایی مهم ترین متغیرهای اقلیمی، پوشش سرزمینی و انسانی بر توزیع گونه چکاوک گندم زار در محدوده منطقه داغ تنوع زیستی ایرانو-آناتولی انجام گرفت. از گونه چکاوک گندم زار به عنوان یک گونه شاخص از پرندگان علف زار در مدل سازی ها استفاده شد تا بتوان نحوه تاثیرپذیری سایر پرندگان هم زیستگاه را پیش بینی نمود. پس از جمع آوری نقاط حضور گونه در محدوده مورد مطالعه، مدل سازی زیستگاه گونه با وارد کردن لایه های اقلیمی، محیطی و انسانی و با استفاده از مدل حداکثر آنتروپی (MaxEnt) در فضای پکیج مدل سازی sdm انجام شد. نتایج حاصل از تجزیه و تحلیل ها و مدل سازی ها نشان داد که این گونه عمدتا ًوابسته به زیستگاه های غرب، شمال و مرکز منطقه ایرانو-اناتولی است. هم چنین فاکتور میانگین بارش سالیانه، میانگین تغییرات فصلی بارش و ردپای انسانی توانستند در مجموع 80 درصد در پیش بینی زیستگاه های مطلوب برای چکاوک گندم زار نقش داشته باشند. در مجموع به نظر می رسد که کشاورزی فشرده و تغییر الگوهای بارشی در دهه های اخیر از جمله موارد تاثیرگذار بر انتخاب زیستگاه پرندگان علف زار هستند. لذا جهت حفاظت از این گونه ها بایستی توجهات لازم به فاکتورهای ذکر شده در مدیریت سرزمینی صورت گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_110514_19b9c6281ae053cbe962cb1c4e946a0f.pdf
2020-09-22
77
84
10.22034/aej.2020.110514
تنوع زیستی
مدیریت زیستگاه
ایران
ترکیه
مدل سازی
چکاوک گندم زار
صیاد
شیخی ئیلانلو
sayyad.sheykhi@ut.ac.ir
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
سهراب
اشرفی
sohrab.ashrafi@ut.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
افشین
علیزاده شعبانی
ashabani@ut.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
Araujo, M.B. and New, M., 2007. Ensemble forecasting of species distributions. Trends in ecology & evolution. Vol. 22, No. 1, pp: 42-47.
1
Araujo, M.B.; Thuiller, W. and Pearson, R.G., 2006. Climate warming and the decline of amphibians and reptiles in Europe. Journal of biogeography. Vol. 33, No. 10, pp: 1712-1728.
2
Ashoori, A.; Kafash, K.; Varasteh Moradi, H.; Yousefi, M.; Kamiab, H.; Behdarvand, N. and Mohammadi, S., 2018. Habitat modeling of the Common Pheasant in a highly modified landscape: application of species distribution models in the study of a poorly documented bird in Iran. European Zoological Journal. Vol. 85, pp: 373-381.
3
Barja, I.; Silvan, G.; Rosellini, S.; Pineiro, A.; Gonzalez Gil, A.; Camacho, L. and Illera, J.C., 2007. Stress physiological responses to tourist pressure in a wild population of European pine marten. The Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. Vol. 104, No. 3-5,
4
pp: 136-142.
5
Barnett, P.R.; Whittingham, M.J.; Bradbury, R.B. and Wilson, J.D., 2004. Use of unimproved and improved lowland grassland by wintering birds in the UK. Agriculture, ecosystems & environment. Vol. 102, No. 1, pp: 49-60.
6
Batary, P.; Baldi, A. and Erdos, S., 2006. Grassland versus non-grassland bird abundance and diversity in managed grasslands: local, landscape and regional scale effects. In Vertebrate Conservation and Biodiversity Springer, Dordrecht. pp: 45-55.
7
Best, L.B.; Bergin, T.M. and Freemark, K.E., 2001. Influence of landscape composition on bird use of rowcrop fields. The Journal of wildlife management. pp: 442-449.
8
Bird Life International. 2018. IUCN red list for birds. Available: http://www. birdlife.org. Accessed 2018 July 1.
9
Blanco, G.; Tella, J.L. and Torre, I., 1998. Traditional farming and key foraging habitats for chough Pyrrhocorax pyrrhocorax conservation in a Spanish pseudosteppe landscape. Journal of Applied Ecology. Vol. 35, No. 2, pp: 232-239.
10
Brennan, L.A. and Kuvlesky Jr, W.P., 2005. North American grassland birds: an unfolding conservation crisis? The Journal of Wildlife Management. Vol. 69, No. 1, pp: 1-13.
11
Brotons, L.; Manosa, S. and Estrada, J., 2004. Modelling the effects of irrigation schemes on the distribution of steppe birds in Mediterranean farmland. Biodiversity and Conservation. Vol. 13, No. 5, pp: 1039-1058.
12
Clavero, M.; Villero, D. and Brotons, L., 2011. Climate change or land use dynamics: do we know what climate change indicators indicate? PLoS One. Vol. 6, No. 4, p e18581.
13
De Chazal, J. and Rounsevell, M.D., 2009. Land-use and climate change within assessments of biodiversity change: a review. Global Environmental Change. Vol. 19, No. 2, pp: 306-315.
14
De Juana, E. and Garcia, A.M., 2005. Fluctuaciones relacionadas con la precipitación en la riqueza y abundancia de aves de medios esteparios mediterráneos. Ardeola. Vol. 52, No. 1, pp: 53-66.
15
Delgado, A. and Moreira, F., 2000. Bird assemblages of an Iberian cereal steppe. Agriculture, ecosystems and environment. Vol. 78, No. 1, pp: 65-76.
16
Delgado, M.P.; Morales, M.B.; Traba, J. and Garcia De la Morena, E.L., 2009. Determining the effects of habitat management and climate on the population trends of a declining steppe bird. Ibis. Vol. 151, No. 3, pp: 440-451.
17
Donald, P.F.; Sanderson, F.J.; Burfield, I.J. and Van Bommel, F.P., 2006. Further evidence of continent-wide impacts of agricultural intensification on European farmland birds, 1990–2000. Agriculture, Ecosystems and Environment. Vol. 116, No. 3-4, pp: 189-196.
18
Ellenberg, U.; Setiawan, A.N.; Cree, A.; Houston, D.M. and Seddon, P.J., 2007. Elevated hormonal stress response and reduced reproductive output in Yellow-eyed penguins exposed to unregulated tourism. General and comparative endocrinology. Vol. 152, No. 1, pp: 54-63.
19
Felton, A.; Knight, E.; Wood, J.; Zammit, C. and Lindenmayer, D., 2010. A meta-analysis of fauna and flora species richness and abundance in plantations and pasture lands. Biological conservation. Vol. 143, No. 3, pp: 545-554.
20
Garcia, R.A.; Burgess, N.D.; Cabeza, M.; Rahbek, C. and Araujo, M.B., 2011. African vertebrate species under warming climates: sources of uncertainty from ensemble forecasting. Global change biology. Vol. 18, pp: 1253-1269.
21
Goriup, P.D., 1988. Ecology and Conservation of Grassland Birds. ICBP Technical Publication, 7, Cambridge.
22
Guisan, A. and Thuiller, W., 2005. Predicting species distribution: offering more than simple habitat models. Ecology letters. Vol. 8, No. 9, pp: 993-1009.
23
Hamer, T.L.; Flather, C.H. and Noon, B.R., 2006. Factors associated with grassland bird species richness: the relative roles of grassland area, landscape structure, and prey. Landscape Ecology. Vol. 21, No. 4, pp: 569-583.
24
Harfoot, M.B.; Newbold, T.; Tittensor, D.P.; Emmott, S.; Hutton, J.; Lyutsarev, V.; Smith, M.J.; Scharlemann, J.P. and Purves, D.W., 2014. Emergent global patterns of ecosystem structure and function from a mechanistic general ecosystem model. PLoS biology. Vol. 12, No. 4, p e1001841.
25
Helzer, C.J. and Jelinski, D.E., 1999. The relative importance of patch area and perimeter area ratio to grassland breeding birds. Ecological applications. Vol. 9, No. 4, pp: 1448-1458.
26
Hijmans, R.J.; Cameron, S.E.; Parra, J.L.; Jones, P.G. and Jarvis, A., 2004. The WorldClim interpolated global terrestrial climate surfaces. Version 1.3.
27
Hirzel, A.H.; Hausser, J.; Chessel, D. and Perrin, N., 2002. Ecological‐niche factor analysis: how to compute habitat suitability maps without absence data? Ecology. Vol. 83,
28
No. 7, pp: 2027-2036.
29
Hof, C.; Araujo, M.B.; Jetz, W. and Rahbek, C., 2011. Additive threats from pathogens, climate and land-use change for global amphibian diversity. Nature. Vol. 480, No. 7378, p 516.
30
Jetz, W.; Wilcove, D.S. and Dobson, A.P., 2007. Projected impacts of climate and land-use change on the global diversity of birds. PLoS biology. Vol. 5, No. 6, p e157.
31
Johnson, D.H. and Igl, L.D., 2001. Area requirements of grassland birds: a regional perspective. The Auk. Vol. 118, No. 1, pp: 24-34.
32
Jones, Z.F. and Bock, C.E., 2002. Conservation of grassland birds in an urbanizing landscape: a historical perspective. The Condor. Vol. 104, No. 3, pp: 643-651.
33
Kleijn, D.; Baquero, R.A.; Clough, Y.; Diaz, M.; De Esteban, J.; Fernandez, F.; Gabriel, D.; Herzog, F.; Holzschuh, A.; Johl, R. and Knop, E., 2006. Mixed biodiversity benefits of agri‐environment schemes in five European countries. Ecology letters. Vol. 9, No. 3, pp: 243-254.
34
Laiolo, P. and Tella, J.L., 2006. Fate of unproductive and unattractive habitats: recent changes in Iberian steppes and their effects on endangered avifauna. Environmental Conservation. Vol. 33, No. 3, pp: 223-232.
35
Lemoine, N.; BAUER, H.G.; Peintinger, M. and Bohning Gaese, K.A.T.R.I.N., 2007. Effects of climate and land‐use change on species abundance in a central European bird community. Conservation Biology. Vol. 21, No. 2, pp: 495-503.
36
Lindenmayer, D.B.; Knight, E.J.; Crane, M.J.; Montague-Drake, R.; Michael, D.R. and MacGregor, C.I., 2010. What makes an effective restoration planting for woodland birds? Biological Conservation. Vol. 143, No. 2, pp: 289-301.
37
Marti, R.; Del Moral, J.C. and de Ornitología, S.E., 2003. Atlas de la aves reproductoras de España. Ministerio de Medio Ambiente, Dirección General de Conservación de la Naturaleza; Sociedad Española de Ornitología (SEO/BirdLife).
38
Maxwell, S.L.; Fuller, R.A.; Brooks, T.M. and Watson, J.E., 2016. Biodiversity: The ravages of guns, nets and bulldozers. Nature News. Vol. 536, No. 7615, p 143.
39
Morales, M.B.; Alonso, J.C. and Alonso, J., 2002. Annual productivity and individual female reproductive success in a great bustard Otis tarda population. Ibis. Vol. 144, No. 2, pp: 293-300.
40
Morelli, F. and Tryjanowski, P., 2015. No species is an island: testing the effects of biotic interactions on models of avian niche occupation. Ecology and evolution. Vol. 5, No. 3, pp: 759-768.
41
Mostafavi, H.; Pletterbauer, F.; Coad, B.W.; Mahini, A.S.; Schinegger, R.; Unfer, G.; Trautwein, C. and Schmutz, S., 2014. Predicting presence and absence of trout (Salmo trutta) in Iran. Limnologica Ecology and Management of Inland Waters. Vol. 46, pp: 1-8.
42
Naimi, B. and Araujo, M.B., 2016. sdm: a reproducible and extensible R platform for species distribution modelling. Ecography. Vol. 39, No. 4, pp: 368-375.
43
Newton, I., 1998. Population limitation in birds. Academic press.
44
Pearson, R.G.; Dawson, T.P.; Berry, P.M. and Harrison, P.A., 2002. SPECIES: a spatial evaluation of climate impact on the envelope of species. Ecological modelling. Vol. 154, No. 3, pp: 289-300.
45
Pearson, R.G.; Raxworthy, C.J.; Nakamura, M. and Townsend Peterson, A., 2007. Predicting species distributions from small numbers of occurrence records: a test case using cryptic geckos in Madagascar. Journal of biogeography. 34, No. 1, pp: 102-117.
46
Phillips, S.J. and Elith, J., 2013. On estimating probability of presence from use availability or presence background data. Ecology. Vol. 94, No. 6, pp: 1409-1419.
47
Puigcerver, M.; Rodriguez-Teijeiro, J.D. and Gallego, S., 1999. The effects of rainfall on wild populations of Common Quail (Coturnix coturnix). Journal für Ornithologie. Vol. 140, No. 3, pp: 335-340.
48
Reino, L.; Beja, P.; Araujo, M.B.; Dray, S. and Segurado, P., 2013. Does local habitat fragmentation affect large‐scale distributions? The case of a specialist grassland bird. Diversity and distributions. Vol. 19, No. 4, pp: 423-432.
49
Rey-Benayas, J.M.; Galván, I. and Carrascal, L.M., 2010. Differential effects of vegetation restoration in Mediterranean abandoned cropland by secondary succession and pine plantations on bird assemblages. Forest Ecology and Management. Vol. 260, No. 1, pp: 87-95.
50
Sala, O.E.; Chapin, F.S.; Armesto, J.J.; Berlow, E.; Bloomfield, J.; Dirzo, R.; Huber-Sanwald, E.; Huenneke, L.F.; Jackson, R.B.; Kinzig, A. and Leemans, R., 2000. Global biodiversity scenarios for the year 2100. Science. Vol. 287, No. 5459, pp: 1770-1774.
51
Sanchez-Zapata, J.A.; Carrete, M.; Gravilov, A.; Sklyarenko, S.; Ceballos, O.; Donazar, J.A. and Hiraldo, F., 2003. Land use changes and raptor conservation in steppe habitats of Eastern Kazakhstan. Biological Conservation. Vol. 111, No. 1, pp: 71-77.
52
Santos, T.; Tellerıa, J.L. and Carbonell, R., 2002. Bird conservation in fragmented Mediterranean forests of Spain: effects of geographical location, habitat and landscape degradation. Biological Conservation. Vol. 105, No. 1, pp: 113-125.
53
Sheykhi Ilanloo, S. and Karimi, S., 2016. Determination of the focus centers with high-priority conservation for birds Case Study: Naqadeh township. Journal of Animal Environment. Vol. 8, No. 3, pp: 29-38.
54
Tella, J.L. and Forero, M.G., 2000. Farmland habitat selection of wintering lesser kestrels in a Spanish pseudosteppe: implications for conservation strategies. Biodiversity and Conservation. Vol. 9, No. 3, pp: 433-441.
55
Thuiller, W.; Lavorel, S.; Araújo, M.B.; Sykes, M.T. and Prentice, I.C., 2005. Climate change threats to plant diversity in Europe. Proceedings of the National Academy of Sciences. Vol. 102, No. 23, pp: 8245-8250.
56
Titeux, N.; Henle, K.; Mihoub, J.B.; Regos, A.; Geijzendorffer, I.R.; Cramer, W.; Verburg, P.H. and Brotons, L., 2016. Biodiversity scenarios neglect future land‐use changes. Global Change Biology. Vol. 22, No. 7, pp: 2505-2515.
57
Venter, O.; Sanderson, E.W.; Magrach, A.; Allan, J.R.; Beher, J.; Jones, K.R.; Possingham, H.P.; Laurance, W.F.; Wood, P.; Fekete, B.M.; Levy, M.A. and Watson, J.E.M., 2016. Global terrestrial Human Footprint maps for 1993 and 2009. Scientific Data 3: 160067
58
Whittingham, M.J.; Swetnam, R.D.; Wilson, J.D.; Chamberlain, D.E. and Freckleton, R.P., 2005. Habitat selection by yellowhammers Emberiza citrinella on lowland farmland at two spatial scales: implications for conservation management. Journal of applied ecology. Vol. 42, No. 2,
59
pp: 270-280.
60
Wiens, J.A.; Rotenberry, J.T. and Van Horne, B., 1986. A lesson in the limitations of field experiments: shrubsteppe birds and habitat alteration. Ecology. Vol. 67, No. 2, pp: 365-376.
61
Yousefi, M.; Kafash, A.; Valizadegan, N.; Sheykhi Ilanloo, S.; Rajabizadeh, M.; Malekoutikhah, S.; Hosseinian Yousefkhani, S.S. and Ashrafi, S., 2019. Climate change a is major problem for biodiversity conservation: A systematic review of recent studies in Iran. Contemporary Problems of Ecology. Vol. 12, pp: 394-403.
62
ORIGINAL_ARTICLE
اثر منابع مختلف مکمل سلنیوم بر عملکرد، خصوصیات لاشه، جمعیت باکتریهای ایلئوم، فراسنجههای خونی، آنزیمهای کبدی، فعالیت هورمونی و فعالیت آنتیاکسیدانی پلاسمای خون در جوجههای گوشتی
تاثیر منابع مختلف مکمل سلنیوم بر عملکرد، خصوصیات لاشه، جمعیت باکتری های ایلئوم، فراسنجه های خونی، آنزیم های کبدی، فعالیت هورمونی و فعالیت آنتی اکسیدانی پلاسمای خون در جوجه های گوشتی در آزمایشی با استفاده از تعداد 500 قطعه جوجه نر یک روزه از سویه تجاری راس 308 در قالب طرح کاملاً تصادفی توسط با 10 تیمار، 5 تکرار (هر تکرار شامل 10 پرنده) انجام شد. تیمارهای آزمایشی شامل: تیمار 1) جیره پایه (شاهد)، تیمارهای 2، 3 و 4) به ترتیب جیره پایه به علاوه 0/5، 0/8 و 1/2 میلی گرم نانوسلنیوم، تیمارهای 5، 6 و 7) به ترتیب جیره پایه به علاوه 0/5، 0/8 و 1/2 میلی گرم متسلنیوم (Met-selenium) و تیمارهای 8، 9 و 10) به ترتیب جیره پایه به علاوه 65، 80 و 100 میلی گرم ویتامین E و سلنیوم، بودند. نتایج نشان داد که اختلاف وزن بدن، شاخص تولید و فعالیت آنتی اکسیدانی در گروه حاوی نانوسلنیوم در مقایسه با شاهد افزایش معنی داری داشت (0/05>P). تعداد باکتری های کلیفرم ایلئوم در جیره های حاوی نانوسلنیوم و مت سلنیوم نسبت به شاهد کاهش معنی داری داشت (0/05>P). آنزیم های کبدی و فاکتورهای خونی در گروه حاوی نانوسلنیوم با شاهد تفاوت معنی داری داشتند (0/05>P). غلظت های T3، T4 و نسبت T3 به T4 در تیمار حاوی 1/2 میلی گرم نانوسلنیوم با شاهد اختلاف معنی داری داشتند (0/05>P). نتایج نشان می دهد که نانوسلنیوم در مقایسه با مت سلنیوم و ویتامین E سلنیوم، می تواند منجر به بهبود بازده تولید در جوجه های گوشتی شود.
http://www.aejournal.ir/article_110689_44470627bcaccf28d9fe35140891afa0.pdf
2020-09-22
85
96
10.22034/aej.2020.110689
آنتیاکسیدان
جوجه گوشتی
سلنیوم
عملکرد
لاشه
روزبه
شعبانی
rozbeh61@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
AUTHOR
جعفر
فخرایی
j-fakhraei@iau-arak.ac.ir
2
گروه علوم دامی، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
LEAD_AUTHOR
حسین
منصوری یاراحمدی
h-mansouri@iau-arak.ac.ir
3
گروه علوم دامی، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
AUTHOR
علیرضا
صیداوی
alirezaseidavi@iaurasht.ac.ir
4
گروه علوم دامی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران
AUTHOR
سهیرات طرفی، م.؛ میرزاده، خ.؛ طباطبائی وکیلی، ص. و چاجی، م.، 1395. اثرات سطوح مختلف نانوسلنیوم محلول در آب بر عملکرد، جمعیت باکتریایی ایلئوم، خصوصیات استخوان درشتنی، برخی فراسنجه های بیوشیمیایی خون و کیفیت بستر در جوجههای گوشتی. پژوهشهای علوم دامی. دوره 26، شماره 4، صفحات 189 تا 211.
1
یوسفی، م.؛ قابل، م.ر. و قاضی خانی شاد، ع.،1393. تاثیر مکمل سلنیوم آلی و غیرآلی بر عملکرد، تولیدمثل، برخی فراسنجه های خونی و سیستم ایمنی مرغ های مادر گوشتی. پژوهش و سازندگی. شماره 2، صفحات 12 تا 19.
2
Abd ElGhany, H. and Tortora-Perez, J.L., 2010. The importance of selenium and the effects of its deficiency in animal health. Small Ruminant Research. Vol. 89, pp: 185-192.
3
Ahmadi, M.; Ahmadian, A.; Poorghasemi, M.; Makovicky, P. and Seidavi, A., 2018. Nano-selenium affects on duodenum, jejunum, ileum and colon characteristics in chicks: An animal model. International Journal of Nano Dimension. Vol. 10, No. 2, pp: 225-229.
4
Ahmadipour, B.; Hassanpour, H.; Asadi, E.; Khajali, F.; Rafiei, F. and Khajali, F., 2015. Kelussia odoratissima Mozzaf–A promising medicinal herb to prevent pulmonary hypertension in broiler chickens reared at high altitude. Journal of Ethnopharmacology. Vol. 159, pp: 49-54.
5
Altan, O.; Pabuccuoglu, A.; Altan, A.; Konyalioglu, S. and Bayraktar, H., 2003. Effect of heat stress on oxidative stress, lipid peroxidation and some stress parameters in broiler. British Poultry Science. Vol. 44, pp: 545-550.
6
Arthur, J.R.; Mc Kenzie, R.C. and Beckett, G.J., 2003. Selenium in the immune system. Nutrition Journal. Vol. 133, pp: 1457-1459.
7
Aviagen. 2014. Ross 308: Broiler Nutrition Specification. Aviagen Ltd., Newbridge, UK.
8
Behne, D. and Kyriakopoulos, A., 2001. Mammalian selenium-containing proteins. Annual Review of Nutrition. Vol. 21, pp: 453-473.
9
Biswastt, A.; Mohan, J. and Sastry, K.V.H., 2006. Effect of higher levels of dietary selenium on production performance and immune responses in growing japanesen quail. British Poultry Science. Vol. 47, pp: 511-515.
10
Cai, S.; Wu, C.; Gong, L.M.; Song, T.; Wu, H. and Zhang, L.Y., 2012. Effects of nano-selenium on performance, meat quality, immune function, oxidation resistance and tissue selenium content in broilers. Poultry Science. Vol. 91, No. 10, pp: 2532-2539.
11
Cantor, A.H.; Moorhead, P.D. and Musser, M.A., 1982. Comparative effects of sodium selenite and selenomethionine upon nutritional muscular dystrophy, selenium-dependent glutathione peroxidase, and tissue selenium concentrations of turkey poults. Poultry Science. Vol.61, pp: 478-484.
12
Chun, F.; Bing, Y. and Damien, C., 2009. Effects of different sources and levels of selenium on performance, thyroid function and antioxidant status in stressed broiler chickens. International Journal of Poultry Science. Vol. 8, No. 6, pp: 583-587.
13
Dhingra, S. and Bansal, M.P., 2006. Attenuation of LDL receptor gene expression by selenium deficiency during hypercholesterolemia. Molecular and Cellular Biochemistry. Vol. 282, pp: 75-82.
14
Edens, F.W., 2001. Involvement of Sel-Plex in physiological stability and performance of broiler chickens. Edited by Science and technology in the feed industry. Nottingham University Press, United Kingdom. pp: 349-376.
15
Edens, F.W.; Carter, T.A.; Parkhurst, C.R. and Sefton, A.E., 2000. Effect of selenium source and litter type on broiler feathering. Journal of Applied Poultry Research. Vol. 9, pp: 407-413.
16
Fellenberg, M.A. and Speisky, H., 2006. Antioxidants: Their effects on broiler oxidative stress and its meat oxidative stability. World's Poultry Science Journal.Vol.62, pp: 53-70.
17
Fitri, N.L.; Piliang, W.G. and Tuty, L.Y., 2012. Effect of supplementation of organic selenium and vitamin E in commercial diets on quails reproduction. Biological Trace Element Research. Vol. 45, pp: 343-350.
18
Heindl, J.; Ledvinka, Z.; Englmaierova, M.; Zita, L. and Tumova, E., 2010. The effect of dietary selenium sources and levels on performance, selenium content in muscle and glutathione peroxidase activity in broiler chickens. Czech Journal of Animal Science. Vol. 55, pp: 572-578.
19
Kasaikina, M.V.; Kravtsova, M.A.; Lee, B.C.; Seravalli, J.; Peterson, D.A.; Walter, J.; Legge, R.; Benson, A.K.; Hatfield, D.L. and Gladyshev, V.N., 2011. Dietary selenium affects host selenoproteome expression by influencing the gut microbiota. FASEB Journal. Vol. 25, No. 7, pp: 2492-2499.
20
Khalaji, S.; zaghari, M.; Hatami, K.H.; Hedari-dastjerdi, S.; lotfi, L. and Nazarian, H., 2011. Blak cumin seed, artemisia Lear as larder misia Siberia and C amellial. Plant extract as phytogenic product in broiler diets and their effects on performance, blood constituents immunity and cecal microbial population. Poultry Science. Vol. 90, pp: 2500-2510.
21
Kose, K.; Dogan, P.; Kardas, Y. and Saraymen, R., 1996. Plasma selenium levels in rheumatoid arthritis. Biological Trace Element Research. Vol.53, pp: 51-56.
22
Koyancu, M. and Yerlikaya, H., 2007. Effect of selenium vitamin E injections of ewes on reproduction and growth of their lambs. South African Journal of Animal Science. Vol. 37, pp: 233-236.
23
Lin, H.; Sui, S.J.; Jiao, H.C.; Buyse, J. and Decuypere, E., 2006. Impaired development of broiler chickens by stress mimicked by corticosterone exposure. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 143, pp: 400-405.
24
Lukaszewicz, E.; Kowalczyk, K. and Jerysz, A., 2011. The effect of sex and feed supplementation with organic selenium and vitamin E on the growth rate and zoometrical body measurements of oat-fattened White Koluda® geese. Turkish Journal of Veterinary and Animal Sciences. Vol. 35, pp: 435-442.
25
Mallah, G.M.; Yassein, S.A.; Magda, M.; Abdel, F. and Ghamry, A.A., 2011. Improving performance and some metabolic response by using some antioxidants in laying diets during summer season. Journal of American Science. Vol. 7, No. 4, pp: 217-224.
26
Marina, V.; Kasaikina, M.A.; Kravtsova, B.L.; Javier, S.; Daniel, A.; Peterson, J.W.; Ryan-Ledge, A.K.; Benson, D.H. and Vadim, N.G., 2011. Dietary selenium effects host selenoproteome expression by influencing the gut microbiota. FASEB Journal. Vol. 25, No. 7, pp: 2492-2499.
27
Moss, D.W., 1982. Alkalin phosphatase isoenzymes. Clinical Chemistry. Vol. 28, No. 10, pp: 2007-2016.
28
Naylor, A.J.; Choc, T.M. and Jacques, K.A., 2000. Effects of selenium source and level on performance and meat quality in male broilers. Poultry Science. Vol. 79, No. 1, pp: 117-123.
29
Nissen, S.; Tuzcu, E.; Schoenhagen, P.; Brown, B.; Ganz, P.; Vogel, R.; Crowe, T.; Howard, G.; Cooper, C.J.; Brodie, B.; Grines, C.L. and DeMaria, A.N., 2004. Effect of intensive compared with moderate lipidlowering therapy on progression of coronary atherosclerosis: a randomized controlled trial. Journal of the American Medical Association. Vol. 291, pp: 1071-1080.
30
Ogburn, C.E.; Austad, S.N.; Holmes, D.J.; Kiklevich, J.V.; Gollahon, K.; Rabinovitch, P.S. and Martin, G.M., 1998. Cultured renal epithelial cells from birds and mice: Enhanced resistance of avian cells to oxidative stress and DNA damage. Journals of Gerontology. Vol. 53, No. 2, pp:287-292.
31
Pappas, A.C.; Acamovic, T.; Sparks, N. H.C.; Surai, P.F. and Mc Devitt, R.M., 2005. Effects of supplementing broiler breeder diets with organic selenium and polyunsaturated fatty acids on egg quality during storage. Poultry Science. Vol.84, pp: 865-874.
32
Payne, R.L. and Southerm, L.L., 2005. Comparison of inorganic and organic selenium sources for broilers. Poultry Science. Vol. 84, pp: 898-902.
33
Peng, X.; Cui, Y.; Cui, W.; Deng, J.L. and Cui, H.M., 2009. The decrease of relative weight, lesions, and apoptosis of bursa of fabricius induced by excess dietary selenium in chickens. Biological Trace Element Research. Vol. 131, pp: 33-42.
34
Perez, T.I.; Zuidhof, M.J.; Renema, R.A.; Curtis, J.M.; Ren, Y. and Betti, M., 2010. Effects of vitamin E and organic selenium on oxidative stability of ω-3 enriched dark chicken meat during cooking. Journal of Food Science. Vol. 75, pp: 25-34.
35
Phong, A.T. and Thomas, J.W., 2011. Selenium nanoparticles inhibit Staphylococcus aureus growth. International Journal of Nanomedicine. Vol. 6, pp: 1553-1558.
36
Poorghasemi, M.; Seidavi, A.R. and Qotbi, A.A.A., 2013. Investigation on fat source effects on broiler chickens performance. Research Journal of BioTechnology. Vol. 8, No. 1, pp: 78-82.
37
Poorghasemi, M.; Seidavi, A.R. and Mohammadi, M., 2014. Effect of inclusion of lemon balm (Melissa officinalis) extract into drinking water on ileum microflora of broilers. International Journal of Biology, Pharmacy and Allied Science. Vol. 3, No. 8, pp: 1920-1925.
38
Ryu, Y.C.; Rhee, M.S.; Lee, K.M. and Kim, B.C., 2005. Effects of different levels of dietary supplemental selenium on performance, lipid oxidation, and color stability of broiler chicks. Poultry Science. Vol. 84, No. 5, pp: 809-815.
39
Sadeghian, S.; Kojouri, G.A. and Mohebbi, A., 2012. Nanoparticles of selenium as species with stronger physiological effects in sheep in comparison with sodium selenite. Biological Trace Element Research. Vol. 146, No. 3, pp: 302-308.
40
Saleh, A.A., 2014. Effect of dietary mixture of Aspergillus probiotic and selenium nano particles on growth, nutrient digestibilities, selected blood parameters and muscle fatty acid profile in broiler chickens. Animal Science. Vol. 32, No. 1, pp: 65-79.
41
Shabani, R.; Fakhraei, J.; Mansoori Yarahmadi, H. and Seidavi, A.R., 2019. Effect of different sources of selenium on performance and characteristics of immune system of broiler chickens. Revista Brasileira de Zootecnia. Accepted January 2019, pp: 1-10.
42
Shen, L. and Sevanian, A., 2001. Ox-LDL induces macrophage gamma-GCS-HS protein expression: A role for ox-LDL-associated lipid hydroproxide in GSH synthesis. Journal of Lipid Research, Vol. 42, pp: 813-823.
43
Stolz, J.F.; Basu, P.; Santini, J.M. and Oremland, R.S., 2006. Arsenic and selenium in microbial metabolism. Annual Review of Microbiology. Vol. 60, pp: 107-130.
44
Surai, P.F., 2002. Selenium in poultry nutrition. Antioxidant properties, deficiency and toxicity. World's Poultry Science Journal. Vol. 58, pp: 333-347.
45
Tanaka, Y.; Sakurai, E. and Lizuka, Y., 2001. Effect of selenium on serum, hepatic and lipoprotein lipids concentration in rats fed on a high-cholesterol diet. Yakugaku Zasshi. Vol. 121, pp: 93-96.
46
Utter back, P.L.; Parsons, C.M.; Yoon, I. and Butler, J., 2005. Effect of supplementing selenium yeast in diets of laying hens on egg selenium content. Poultry Science. Vol. 84, pp:1900-1901.
47
Yang, J.; Huang, K.; Qin, S.; Wu, X.; Zhao, Z. and Chen, F., 2009. Antibacterial action of selenium-enriched probiotics against pathogenic Escherichia coli. Digestive Diseases and Sciences. Vol. 54, No. 2, pp: 246-254.
48
Zelenka, J. and Fajmonova, E., 2005. Effect of age on utilization of selenium by chicken. Poultry Science. Vol. 84, pp:543-546.
49
Zamani-Moghaddam, A.K.; Mehraei-Hamzekolaei, M.H.; Khajali, F. and Hassanpour, H., 2017. Role of selenium from different sources in prevention of pulmonary arterial hypertension syndrome in broiler chickens. Biological Trace Element Research. Vol. 180, pp: 164-170.
50
Zhang, J.S.; Gao, X.Y.; Zhang, L.D. and Bao, Y.P., 2001. Biological effects of a nano red elemental selenium. BioFactors. Vol. 15, pp: 27-38.
51
Zhihua, R.; Zhiping, Z.; Yangquan, W. and Kehe, H., 2011. Preparation of selenium/zinc-enriched probiotics and their effect on blood selenium and zinc concentrations, antioxidant capacities and intestinal micro flora in canine. Biological Trace Element Research. Vol. 141, pp: 170-183.
52
ORIGINAL_ARTICLE
تجزیه و تحلیل بیزین پارامترهای ژنتیکی برای صفات ایمنی همورال و باقی مانده مصرف خوراک در بلدرچین ژاپنی
هدف از این مطالعه برآورد پارامترهای ژنتیکی صفات ایمنی هومورال (تیتر آنتی بادی علیه سلول های قرمز خونی گوسفندی (SRBC) و ویروس بیماری نیوکاسل (NDV)) و باقی مانده مصرف خوراک از 20 تا 45 روزگی در بلدرچین ژاپنی بود. بدین منظور از تعداد 2492 رکورد صفت باقی مانده مصرف خوراک و 5238 رکورد مربوط به صفات ایمنی استفاده شد. پارامترهای ژنتیکی صفات با استفاده از تجزیه و تحلیل تک و دو صفتی از طریق نمونه گیری گیبس برآورد شد. وراثت پذیری های برآورد شده برای تیتر آنتی بادی کل (AbT)، تیتر (IgY) ایمونوگلوبولین Y، تیتر (IgM) ایمونوگولوبولین M و تیتر (IgF) ایمونوگولوبولین F برعلیه SRBC به ترتیب برابر 0/08، 0/14، 0/02 و 0/24 اما وراثت پذیری تیتر آنتی بادی برعلیه (NDV (AbNDV پایین تر از برآوردهای آنتی ژن (0/05=SRBC (h2 بود. وراثت پذیری باقی مانده مصرف خوراک در سنین مختلف در دامنه 0/04 تا 0/07 به دست آمد. همبستگی ژنتیکی بین تیتر آنتی بادی کل و IgY مثبت و بالا (0/92) بود. همبستگی ژنتیکی بین RFI با IgM منفی و با سایر ایمونوگولوبولین ها (IgY, AbT, IgF) و NDV مثبت بود. از این مطالعه نتیجه گیری می شود که انتخاب برای IgF با وراثت پذیری 0/24 به دلیل داشتن همبستگی ژنتیکی منفی (0/23-) با باقی مانده مصرف خوراک موجب بهبود این صفت و کاهش هزینه ها، عمدتاً مرتبط با بحث خوراک و انتخاب از روی فنوتیپ حیوانات، می شود. از طرفی به دلیل همبستگی مثبت، متوسط و بالای آن با سایر ایمونوگلوبولین ها (0/80-0/34) انتخاب آن منجر به کاهش پاسخ های ایمنی هومورال در بلدرچین نمی شود.
http://www.aejournal.ir/article_110811_289d58268206cab83a12fea3be0c1b5e.pdf
2020-09-22
97
104
10.22034/aej.2020.110811
ایمنی همورال
باقی مانده مصرف خوراک
تیتر آنتی بادی
وراثت پذیری
همبستگی ژنتیکی
SRBC
مژده
محمودی زرندی
mozhdeh3940@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زابل، زابل، ایران
AUTHOR
محمد
رکوعی
rokouei1355@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زابل، زابل، ایران
LEAD_AUTHOR
مهدی
وفای واله
me.va84@gmail.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زابل، زابل، ایران
AUTHOR
علی
مقصودی
alimaghsouditmu@gmail.com
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه زابل، زابل، ایران
AUTHOR
نیکولاس
هادسون
rokouei@gmail.com
5
دانشکده کشاورزی و صنایع غذایی، دانشگاه کوئینزلند، بریزبین، استرالیا
AUTHOR
Aggrey, S.; Karnuah, A.B.; Sebastian, B. and Anthony, N.B., 2010. Genetic properties of feed efficiency parameters in meat type chickens. Genet. Select. Evol. Vol. 42, p: 25.
1
Balthazart, J.; Baillien, M.; Charlier, T.D.; Cornil, C.A. and Ball, G.F., 2003. The neuroendocrinology of reproductive behavior in Japanese quail. Domest. Anim. Endocrinol. Vol. 25, pp: 69-82.
2
Bao, M.; Bovenhuis, H.; Nieuwland, M.G.; Parmentier, H.K. and Van der Poel, J.J., 2016. Genetic parameters of IgM and IgG antibodies binding autoantigens in healthy chickens. Poult. Sci. Vol. 95, pp: 458-465.
3
Beilharz, R.G.; Luxford, B.G. and Wilkinson, J.L., 1993. Quantitative genetics and evolution: Is our understanding of genetics sufficient to explain evolution? Journal of Anim. Breed. Genet. Vol. 110, pp: 161-170.
4
Berghof, T.V.L.; Van der Klein, S.A.S.; Arts, J.A.J.; Parmentier, H.K.; Van der Poel, J.J. and Bovenhuis, H., 2015. Genetic and Non-Genetic Inheritance of Natural Antibodies Binding Keyhole Limpet Hemocyanin in a Purebred Layer Chicken Line. PLoS One. Vol. 10, No. 6.
5
Bovenhuis, H.; Bralten, H.; Nieuwland, M.G. and Parmentier, H.K., 2002. Genetic parameters for antibody response of chickens to sheep red blood cells based on a selection experiment. Poult. Sci. Vol. 81, pp: 309-315.
6
Cain, J.R. and Cawley, W.O., 1972. Care management propagation: japanese quail (coturnix). Texas Agricultural Experiment Station. http://hdl .handle .net /1969 .1 /92988.
7
Cunningham, C.H., 1971. Virologia Practica. 6th Ed. 260 p.
8
Demas, G.E.; Adamo, S.A. and French, S.S., 2011. Neuroendocrine-immune crosstalk in vertebrates and invertebrates: implications for host defense. Funct. Ecol. Vol. 25, pp: 29-39.
9
Dunnington, E.A., 1990. Selection and homeostasis. Proceedings of the 4th World Congress on genetics applied to livestock production. Edinburgh, Scotland, UK. pp: 5-12.
10
Dunnington, E.A.; Larsen, C.T.; Gross, W.B. and Siegel, P.B., 1992. Antibody responses to combinations of antigens in white leghorn chickens of different background genomes and major histocompatibility complex genotypes. Poult. Sci. Vol. 71, pp: 1801-1806.
11
Jones, R.B.; Mills, A.D. and Faure, J.M., 1991. Genetic and experiential manipulation of fear-related behavior in Japanese quail chicks (Coturnix coturnix japonica). J. Comp. Psychol. Vol. 105, pp: 15-24.
12
Kayang, B.B.; Vignal, A.; Inoue-Murayama, M.; Miwa, M.; Monvoisin, J.L.; Ito, S. and Minvielle, F., 2004. A first generation micro satellite linkage map of the Japanese quail. Anim. Genet. Vol. 35, pp: 195-200.
13
Leitner, G.; Uni, Z.; Cahaner, A.; Gutman, M. and Dan Heller, E., 1992. Replicated Divergent Selection of Broiler Chickens for High or Low Early Antibody Response to Escherichia coli Vaccination. Poult. Sci. Vol. 71, pp: 27-37.
14
Liu, T.; Qu, H.; Luo, C.; Li, X.; Shu, D.; Sandø Lund, M. and Su, G., 2014. Genomic Selection for the Improvement of Antibody Response to Newcastle Disease and Avian Influenza Virus in Chickens. PLoS One. Vol. 9, No. 11, p: e112685.
15
Lotfi, E.; Zerehdaran, S. and Raoufi, Z., 2011. Genetic properties of egg quality traits and their correlations with performance traits in Japanese quail. Brit. Poultry. Sci. Vol. 53, pp: 585-591.
16
Luiting, P. and Urff, E.M., 1991. Optimization of a model to estimate residual feed consumption in the laying hen. Livest. Prod. Sci. Vol. 27, pp: 321-338.
17
Lwelamira, J., 2012. Phenotypic and genetic parameters for body weights and antibody response against Newcastle disease virus (NDV) vaccine for Kuchi chicken ecotype of Tanzania under extensive management. Trop. Anim. Health. Prod. Vol. 44, pp: 1529-1534.
18
Lwelamira, J.; Kifaro, G.C. and Gwakisa, P.S., 2009. Genetic parameters for body weights, egg traits and antibody response against Newcastle disease virus (NDV) vaccine among two Tanzania chicken ecotypes. Trop. Anim. Health. Prod. Vol. 41, pp: 51-59.
19
Mills, A.D. and Faure, J.M., 1991. Divergent selection for duration of tonic immobility and social reinstatement behavior in Japanese quail (Coturnix coturnix japonica) chicks. J. Comp. Psychol. Vol. 105, pp: 25-38.
20
Misztal, I.; Tsuruta, S.; Strabel, T.; Auvray, B.; Druet, T. and Lee, D.H., 2002. BLUPF90 and related programs (BGF90). 7th World Congress on Genetics Applied to Livestock Production, Montpellier, France. CD-ROM. Communication number. pp: 28-70.
21
Mohammadabadi, M.R.; Nikbakhti, M.; Mirzaee, H.R.; Shandi, A.; Saghi, D.A.; Romanov, M.N. and Moiseyeva, I.G., 2010. Genetic variability in three native Iranian chicken populations of the Khorasan province based on microsatellite markers. Russ. J. Genet. Vol. 46, No. 4, pp: 505-509.
22
Mohammadi-Tighsiah, A.; Maghsoudi, A.; Bagherzadeh Kasmani, F.; Rokouei, M. and Faraji-Arough, H., 2018. Bayesian analysis of genetic parameters for early growth traits and humoral immune responses in Japanese quail. Journal of Livest. Sci. Vol. 216, pp: 197-202.
23
Møller, A.P.; Christe, P.; Erritzøe, J. and Mavarez, J., 1998. Condition, disease and immune defence. Oikos. Vol. 83, pp: 301-306.
24
Moradian, H.; Esmailizadeh, A.K.; Sohrabi, S.; Nasirifar, E.; Askari, N.; Mohammadabadi, M.R. and Baghizadeh, A., 2014. Genetic analysis of an F2 intercross between two strains of Japanese quail provided evidence for quantitative trait loci affecting carcass composition and internal organs. Mol. Biol. Rep. Vol. 41, No. 7, pp: 4455-4462.
25
Narinc, D.; Aksoy, T.; Karaman, E.; Aygun, A.; Firat, M.Z. and Uslu, M.K., 2013. Japanese quail meat quality: characteristics, heritabilities, and genetic correlations with some slaughter traits. Poult. Sci. Vol. 92, pp: 1735-1744.
26
Ori, R.J.; Esmailizadeh, A.K.; Charati, H.; Mohammadabadi, M.R. and Sohrabi, S.S., 2014. Identification of QTL for live weight and growth rate using DNA markers on chromosome 3 in an F2 population of Japanese quail. Mol. Biol. Rep. Vol. 41, No. 2, pp: 1049-1057.
27
Pinard, M.H.; Janss, L.L.G.; Maatman, R.; Noordhuizen, J.P.T.M. and van der Zijpp, A.J., 1993. Effect of divergent selection for immune responsiveness and of major histocompatibility complex on resistance to Mareks disease in chickens. Poult. Sci. Vol. 72, pp: 391-402.
28
Pinard, M.H.; Van Arendonk, J.A.; Nieuwland, M.G. and Van Der Zijpp, A.J., 1992. Divergent selection for immune responsiveness in chickens: estimation of realized heritability with an animal model. Journal of Anim. Sci. Vol. 70, pp: 2986-2993.
29
Sacco, R.E.; Nestor, K.E.; Saif, Y.M.; Tsai, H.J. and Patterson, R.A., 1994. Effect of genetic selection for increased body weight and sex of poult on antibody response of turkeys to Newcastle disease virus and Pasteurella multocida vaccines. Avian. Dis. Vol. 38, pp: 33-36.
30
Siegel, P.B. and Honaker, C.F., 2009. Impact of genetic selection for growth and immunity on resource allocations. Journal of Appl. Poult. Res. Vol. 18, pp: 125-130.
31
Silva, L.P.; Ribeiro, J.C.; Crispim, A.C.; Felipe, G.; Silva, A.; Bonafe, C.M.; Silva, F.F. and Torres, R.A., 2013. Genetic parameters of body weight and egg traits in meat type quail. Journal of Livest. Sci. Vol. 153, pp: 27-32.
32
Sohrabi, S.S.; Esmailizadeh, A.K.; Baghizadeh, A.; Moradian, H.; Mohammadabadi, M.R.; Askari, N. and Nasirifar, E., 2012. Quantitative trait loci underlying hatching weight and growth traits in an F2 intercross between two strains of Japanese quail. Anim. Prod. Sci. Vol. 52, No. 11, pp: 1012-1018.
33
Sun, Y.; Biscarini, F.; Bovenhuis, H.; Parmentier, H.K. and van der Poel, J.J., 2013a. Genetic parameters and across-line SNP associations differ for natural antibody isotypes IgM and IgG in laying hens. Anim. Genet. Vol. 44, pp: 413-424.
34
Sun, Y.; Ellen, E.D.; Parmentier, H.K. and Van der Poel, J.J., 2013b. Genetic parameters of natural antibody isotypes and survival analysis in beak-trimmed and non-beak-trimmed crossbred laying hens. Poult. Sci. Vol. 92, pp: 2024-2033.
35
Van Der Zijpp, A.J. and Leenstra, F.R., 1980. Genetic analysis of the humoral immune response of White Leghorn chicks. Poult. Sci. Vol. 59, pp: 1363-1369.
36
Van Eerden, E., 2007. Residual feed intake in young chickens: Effects on energy partitioning and immunity. PhD Thesis, Wageningen University, The Netherlands. 168 P.
37
Wegmann, T.G. and Smithies, O., 1966. A Simple Hemagglutination System Requiring Small Amounts of Red Cells and Antibodies. Transfusion. Vol. 6, pp: 67-73.
38
West, B. and Zhou, B.X., 1989. Did chicken go north? New evidence for domestication. Worlds Poult. Sci. J. Vol. 45, pp: 205-218.
39
Wijga, S.; Parmentier, H.K.; Nieuwland, M.G. and Bovenhuis, H., 2009. Genetic parameters for levels of natural antibodies in chicken lines divergently selected for specific antibody response. Poult. Sci. Vol. 88, pp: 1805-1810.
40
Yalcin, S.; Oguz, I. and Otles, S., 1995. Carcass characteristics of quail (Coturnix coturnix japonica) slaughtered at different ages. Brit. Poultry. Sci. Vol. 36, pp: 393-399.
41
Zerehdaran, S.; Lotfi, E. and Rasouli, Z., 2012. Genetic evaluation of meat quality traits and their correlation with growth and carcase composition in Japanese quail. Brit. Poultry. Sci. Vol. 53, pp: 756-762.
42
Zhao, X.L.; Honaker, C.F. and Siegel, P.B., 2012. Phenotypic responses of chickens to long-term selection for high or low antibody titers to sheep red blood cells. Poult. Sci. Vol. 91, pp: 1047-1056.
43
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی عدم تقارن صفات مریستیک ناحیه سر مار آتشی (Dolichophis schmidti) و مار سیاهسوجه (Dolichophis jugularis) در شمال ایران
اختلالات تکوینی در خزندگان می تواند منجر به عدم تقارن صفات ریخت شناسی ازجمله عدم تقارن در تعداد فلس ها و هم چنین اسکلت شده و آن ها را از حالت طبیعی منحرف کند. بنابراین در این مطالعه، مار آتشی (Dolichophis schmidti) و مار سیاه سوجه (Dolichophis jugularis) دو گونه از مارهای غیرسمی متعلق به خانواده Colubridae، از نظر اختلالات ریختی و عدم تقارن صفات مریستیک در شمال ایران مورد بررسی قرار گرفتند. در این پژوهش، ۱۳ صفت مریستیک ناحیه سر ۳۳ نمونه مار آتشی (۱۶نمونه نر، ۶ نمونه ماده، ۵ نمونه نابالغ، ۶ نمونه با جنسیت نامشخص) و ۲۸ نمونه مار سیاهسوجه (۱۵ نر، ۷ ماده، ۵ نابالغ و ۱ نمونه با جنسیت نامشخص) از استانهای آذربایجان غربی، آذربایجان شرقی، البرز، مازندران، گلستان، چهارمحال و بختیاری، لرستان، خراسان رضوی و زنجان متعلق به موزه جانورشناسی دانشگاه گلستان (ZMGU)، آزمایشگاه دانشگاه گنبد و کلکسیون شخصی در زیراستریومیکروسکوپ مورد بررسی قرار گرفتند. نتایج نشان داد که نمونه های مار آتشی از نظر فلس های لب بالا (۳ نمونه)، لب پایین (5 نمونه)، زیرچشمی قدامی (1 نمونه)، عقب چشمی (۱ نمونه)، گیجگاهی (7 نمونه)، جلوبینی (۲ نمونه) و فلس های گونه ای (1 نمونه) نامتقارن بودند. هم چنین نمونههای مار سیاهسوجه از نظر فلس های لب بالا (۳ نمونه)، لب پایین (۷ نمونه)، زیرچشمی قدامی (1 نمونه)، گیجگاهی (۵ نمونه)، گونه ای (۳ نمونه) در سمت راست و چپ عدم تقارن نشان دادند. این عدم تقارن صفات ریختی در مار آتشی و مار سیاه سوجه ممکن است ناشی از اختلالات جنینی، هموزیگوتی غالب و تغییرات ژنتیکی باشد.
http://www.aejournal.ir/article_111133_d844c74c1d2152422e76b06c85e54276.pdf
2020-09-22
105
114
10.22034/aej.2020.111133
صفات نامتقارن مریستیک
Dolichophis schmidti
Dolichophis jugulari
ایران
صایاد
فراغی
fsaya2030@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران
AUTHOR
حاجی قلی
کمی
hgkami2000@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
زین العابدین
محمدی
mohammadi.zenal@gmail.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران
AUTHOR
احمدپناه، ن.، ۱۳۸۸. جمعآوری و شناسایی مارهای غرب استان گلستان. پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشگاه پیام نور استان تهران. ۹۲ صفحه.
1
خانی، ش.؛ کمی، ح.ق. و رجبیزاده، م.، ۱۳۹۶. بررسی صفات مریستیک نامتقارن ناحیه سر افعی قفقازی Gloydiushalyscaucasicus در استان های گلستان و مازندران. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 2، صفحات 115 تا 120.
2
رجبی زاده، م.، ۱۳۹۷. مارهای ایران. انتشارات ایران شناسی.۴۹۶ صفحه.
3
قاضی خانلو، ا.، ۱۳۹۲. مطالعه فونستیک مارهای استان مازندران. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه گلستان. ۱۴۵ صفحه.
4
کرمی، م.، ۱۳۷۹. جانورشناسی (۱) بیمهرگان. انتشارات دانشگاه شاهد. ۴۱۶ صفحه.
5
لطیفی، م.، ۱۳۷۹. مارهای ایران. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. ۴۷۸ صفحه.
6
مظفری، ا.؛ کمالی، ک. و فهمیمی، ه.، ۱۳۹۵. اطلس خزندگان ایران. انتشارات جهاد دانشگاهی واحد استان البرز. ۳۶۱ صفحه.
7
Arnold, S.J. and Peterson, C.R., 2002. A model for optimal reaction norms: the case of the pregnant garter snake and her temperature sensitive embryos. Am Nat. Vol. 160, pp: 306-316.
8
Brown, G.P.; Madsen, T.; Madsen, S. and Shine, R., 2017. The causes and ecological correlates of head scale asymmetry and fragmentation in a tropical snake. Scientific Reports. 10.1038/s41598-017-11768-y.
9
Deeming, D.C., 2004. Post-hatching phenotypic effects of incubation in reptiles. In: Deeming DC, ed Reptilian incubation: environment, evolution and behaviour. Nottingham: Nottingham University Press. pp: 229-251.
10
Hagman, M.; Lowenborg, K. and Shine, R., 2015. Determinants of anti-predator tactics in hatchling grass snakes (Natrix natrix). Behavioural Processes, 113: 60–65.
11
Helle, S.; Huhta, E.; Suorsa, P. and Hakkarainen, H., 2011. Fluctuating asymmetry as a biomarker of habitat fragmentation in an area-sensitive passerine, Eurasian the Treecreeper (Certhia familiaris). Ecological Indicators. Vol. 11, pp: 161-161.
12
Herczeg, G.; Szabo, K. and Korsos, Z., 2005. Asymmetry and population characteristics in dice snakes (Natrix tessellata): an interpopulation comparison. Amphibia Reptilia. Vol. 26, pp: 422-426.
13
Ji, X.; Qiu, Q.B. and Diong, C.H., 2002. Influence of incubation temperature on hatching success, energy expenditure for embryonic development, and size and morphology of hatchlings in the oriental garden lizard, Calotes versicolor (Agamidae). J Exp Zool. Vol. 292, pp: 649-659.
14
Laia, R.C.; Pinto, M.P.; Menezes, V.A. and Rocha, C.F.D., 2015. Asymmetry in reptiles: What do we know so far? Springer Science Reviews. Vol. 3, pp: 13-26.
15
Lourdais, O.; Shine, R.; Bonnet, X.; Guillon, M. and Naulleau, G., 2004. Climate affects embryonic development in a viviparous snake, Vipera aspis. Oikos. Vol. 104, pp: 551-560.
16
Lowenborg, K.; Shine, R. and Hagman, M., 2011. € Fitness disadvantages to disrupted embryogenesis impose selection against suboptimal nest-site choice by female grass snakes, Natrix natrix (Colubridae). Journal of Evolutionary Biology Vol. 24, pp: 177-183.
17
Lowenborg, K. and Hagman, M., 2017. Scale asymmetries and lateral rib duplication in snakes: correlates and effects on locomotor performance. Biological Journal of the Linnean Society. Vol. 120, pp: 189-194.
18
Moller, A.P. and Swaddle, J.P., 1997. Asymmetry developmental stability and evolution. Oxford University Press, Oxford, UK.
19
Nagy, Z.T.; Lawson, R.; Joger, U. and Wink, M., 2004. Molecular systematics of racers, Whip snakes and relatives (Reptilia: Colubridae) using mitochondrial and nuclear markers. Journal of Zoological Systematics and Evolutionary Research. Vol. 42, No. 3, pp: 223-233.
20
Qualls, C.P. and Andrews, R.M., 1999. Cold climates and the evolution of viviparity in reptiles: cold incubation temperatures produce poor-quality offspring in the lizard, Sceloporus virgatus. Biol J Linn Soc. Vol. 67, pp: 353-376.
21
Rastegar-Pouyani, N.; Kami, H.G.; Rajabzadeh, M.; Shafiei, S. and Anderson S.C., 2008. Annotated Checklist of Amphibians and Reptiles of Iran. Iranian Journal of Animal Biosystematics. Vol. 4, No. 1, pp: 7-30.
22
Safaei-Mahroo, B.; Ghaffari, H.; Fahimi, H.; Broomand, S.; Yazdanian, M.; Najafimajd, E.; Hossinian Yousefkhani, S.; Rezazadeh, E.; Hosseinzadeh, M.; Nasrabadi, R.; Rajabizadeh, M.; Mashayekhi, M.; Motesharei, A.; Naderi, A. and Kazemi, M., 2015. The Herpetofauna of Iran: Checklist of Taxonomy, Distribution and Conservation Status. Asian Herpetological Research. Vol. 6, No. 4, pp: 211-212.
23
Schaetti, B. and Monsch, P., 2004. Systematics and phylogenetic relationships of Whip snake (Hierophis Fitzinger) and Zamenis andreana Werner 1917 (Reptilia: Squamata: Colubridae). Revue Suisse de Zoologie. Vol. 111, No. 2, pp: 239-256.
24
Soule´, M., 1967. Phenetics of natural populations.2. Asymmetry and evolution in a lizard. Am Nat. Vol. 101, pp: 141-160.
25
Telemeco, R.S; Warner, D.A.; Reida, M.K. and Janzen, F.J., 2013. Extreme developmental temperatures result in morphological abnormalities in painted turtles (Chrysemys picta): a climate change perspective. Integrative Zoology. Vol. 8, pp: 197-208.
26
Vangestel, C. and Lens, L., 2011. Does fluctuating asymmetry constitute a sensitive biomarker of nutritional stress in House Sparrows (Passer domesticus)? Ecological Indicators. Vol. 11, pp: 311-314.
27
Werner, Y.L. and Shapira, T., 2011. A brief review of morphological variation in Natrix tessellata in Israel: between sides, among individuals, between sexes, and among regions. Turk J Zool. Vol. 35, pp: 451-466.
28
ORIGINAL_ARTICLE
سنجش ارتباط غلظت عناصر کمیاب با پارامترهای رشد (طول و سن) در شگ ماهی دریایی (Alosa braschnikowi) در سواحل استان گیلان
در این مطالعه 34 عنصر مختلف ازجمله فلزات سنگین سمی و غیرسمی در بافت کبد، عضله، گناد، کلیه و پوست شگ ماهی دریایی (Alosa braschnikowi) بررسی شد. هم چنین ارتباط بین تجمع این عناصر با پارامترهای رشد (سن و طول) و شاخص های فیزیولوژیک (ضریب چاقی، وزن نسبی و شاخص کبدی) مورد بررسی قرار گرفت. تعداد 74 عدد ماهی در فصول صیادی (پاییز 96 – بهار 97) از سه ایستگاه آستارا، انزلی و کیاشهر در سواحل جنوبی دریای خزر تهیه شد. اندازه گیری عناصر با استفاده از دستگاه ICP- OES انجام گرفت. اختلاف بین بافت ها از نظر تجمع غلظت فلزات معنی دار بود به طوری که حداکثر میانگین غلظت فلزات کروم، مولیبدن و استرونسیوم در بافت عضله، فلزات آلومینیم، آرسنیک، باریم، منگنز، وانادیوم و نیکل در بافت پوست، فلزات کادمیوم، کبالت، لیتیوم و سرب در بافت کلیه، فلزات مس و آهن در بافت کبد و فلز روی در بافت گناد مشاهده شد. در هر پنج بافت عضله، پوست، کلیه، کبد و گناد بیش ترین غلظت فلزات مربوط به آهن و کم ترین غلظت فلزات مربوط به باریم، نیکل و کادمیم بود. بررسی ارتباط غلظت فلزات در بافت ها با پارامترهای رشد (طول و سن) نشان داد که بین فلزات آرسنیک، کادمیم، کبالت، کروم، مس، آهن، منگنز، استرونسیوم و روی با پارامترهای رشد همبستگی مثبت معنی دار وجود دارد و قوی ترین رابطه مثبت و معنی دار بین فلز مس با سن بود (0/05>p)و (0/40=R) . هم چنین بین فلزات آرسنیک، آهن، آلومینیم، باریم، کروم، مس، لیتیوم، مولیبدن، منگنز، نیکل، سرب و استرونسیوم با شاخص های فیزیولوژیک همبستگی مثبت وجود داشت.
http://www.aejournal.ir/article_112706_30a131d91894ca2480e32d9ecab1c3e2.pdf
2020-09-22
115
122
10.22034/aej.2020.112706
عناصر کمیاب
پارامتر رشد
استان گیلان
Alosa braschnikowi
ICP-OES
مسعود
ستاری
msattari647@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان ، صومعه سرا، ایران
LEAD_AUTHOR
جاوید
ایمانپور نمین
javidiman@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان ، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
مهدی
بی باک
mehdi.bibak65@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان ، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
محمد
فروهر واجارگاه
mohammad.forouhar@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان ، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
محمد حسین
مزارعی
mohammad.mazareiy@gmail.com
5
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان ، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
Stolberg, F.; Borysova, O.; Mitrofanov, I.; Barannik, V. and Eghtesadi, P., 2006. Global international water assessment. 14 p.
1
Plaskett, D. and Potter, I., 1979. Heavy metal concentrations in the muscle tissue of 12 species of teleost's from cockburn sound, Western Australia. Australian Journal of Marine and Freshwater Research. Vol. 30, No. 5, pp: 607.
2
Mohammadnabizadeh, S.; Pourkhabbaz, A.; Afshari, R. and Nowrouzi, M., 2012. Concentrations of Cd, Ni, Pb, and Cr in the two edible fish species Liza klunzingeri and Sillago sihama collected from Hara biosphere in Iran. Toxicological & Environmental Chemistry. Vol. 94, No. 6, pp: 1144-1151.
3
Mance, G., 1990. Pollution threat of heavy metals in aquatic environments. Elsevier, London.
4
Adriano, D.C., 1986. Trace element in the terrestrial environment. Springer Verlag, Berlin, Heidelberg, New York. 536 p.
5
Coad, B.W., 2012. The freshwater fishes of Iran. Adopted from www.Briancoad.com
6
Dural, M.; Goksu, Z.L. and Ozark, A.A., 2007. Investigation of heavy metal levels in economically important fish species captured from the Tuzla Lagoon. Food Chemistry. Vol. 102, pp: 415-421.
7
Filazi, A.; Baskaya, R. and Kum, C., 2003. Metal concentration in tissues of the Black Sea fish Mugil auratus from sinop-Icliman. Turkey. Human & Experimental Toxicology. Vol. 22, pp: 85-87.
8
Canli, M. and Atli, G., 2003. The relationships between heavy metal (Cd, Cr, Cu, Fe, Pb, Zn) levels and the size of six Mediterranean fish species. Environmental Pollution. Vol. 121, pp: 129-136.
9
Muramoto, S., 1983. Elimination of copper from Cu-contaminated fish by long term exposure to EDTA and freshwater. Journal Environmental Science Health. Vol. 18, No. 3, pp: 455-461.
10
Neugebauer, E.A.; Sans Cartier, G.L. and Wakeford, B.J., 2000. Methods for the determination of metals in wildlife tissues using various atomic absorption spectrophotometry techniques. Canadian Wildlife Service. 65 p.
11
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی ضایعات هیستوپاتولوژیک بافت آبشش ماهی سرخو معمولی (Lutjanus johnii) و سنگسر معمولی (Pomadasys kaakan) دریای عمان
به دلیل تماس مستقیم آبشش ماهی با آب، این اندام در مقابل آلاینده های محیطی بسیار آسیب پذیر بوده و شاخص مناسبی جهت بررسی وضعیت آلاینده ها در محیط های آبی محسوب می شود. در این مطالعه بررسی تغییرات هیستوپاتولوژیک بافت آبشش به منظور ارزیابی سلامت ماهیان سرخو معمولی (Lutjanus johnii) و سنگسر معمولی (Pomadasys kaakan) در دریای عمان انجام گردید. 18 قطعه ماهی سنگسر معمولی و ماهی سرخو معمولی بهترتیب با میانگین طول کل 3/41±22/5 و 4/35±35/5 سانتی متر و میانگین وزن کل 22±205/6 و 58/5±512/6 گرم از سه ایستگاه رمین، هفت تیر و کنارک در دریای عمان با استفاده از تور گوشگیر در زمستان 1395 صید گردید. پس از تشریح ماهی، بافت آبشش جداسازی و در محلول بوئن تثبیت شد. پس از انجام مراحل معمول بافت شناسی، مقاطع عرضی بافتی با ضخامت پنج میکرون با استفاده از میکروتوم از آبشش تهیه گردید. رنگ آمیزی مقاطع بافتی بهروش هماتوکسیلین-ائوزین انجام و در نهایت به وسیله میکروسکوپ نوری مجهز به دوربین عکاسی دیجیتال شدت ضایعات بافتی بررسی شد. نتایج هیستوپاتولوژیک آبشش نشان دهنده ضایعات بافتی چون به هم چسبیدگی لاملای ثانویه، افزایش ترشحات موکوسی و مخاطی، خمیدگی لاملای ثانویه، ادم بافتی، پرخونی، نکروز، دژنراسیون لاملا، چماقی (گرزی) شدن، تورم سلول های لاملا، هایپرپلازی و اتصال رأس لاملاها بود. کم ترین ضایعات در بافت آبشش ماهی سرخو معمولی و ماهی سنگسر معمولی به ترتیب مربوط به ایستگاه های کنارک و رمین بود. هم چنین بیش ترین ضایعات در آبشش هر دو گونه ماهی در ایستگاه هفت تیر مشاهده شد. بسته بودن محیط ایستگاه هفت تیر و نزدیکی با دو اسکله پر تردد شهید کلانتری و شهید بهشتی می تواند علت این امر باشد.
http://www.aejournal.ir/article_112925_5b2a7014f8f75497276ce03f529a8392.pdf
2020-09-22
123
130
10.22034/aej.2020.112925
ضایعات بافتی
آبشش
ماهی
دریای عمان
پروین
صادقی
parvin.sadeghi@gmail.com
1
گروه زیستشناسی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
LEAD_AUTHOR
امید
کوهکن
omidkoohkaan@gmail.com
2
گروه زیستشناسی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
AUTHOR
آمنه
مرادی
amenh.moradi@yhoo.com
3
گروه زیستشناسی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
AUTHOR
خلیفی،خ.؛ سلامت، ن.؛ موحدی نیا، ع. و سلاطی، ا.پ.، 1393. استفاده از درجه تغییرات بافتی آبشش ماهی کفشک راستگرد بهعنوان بیواندیکاتور آلودگی خور موسی. فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان. دوره 2، شماره 3، صفحات 89 تا 105.
1
سلیمانی، ز.؛ سلامت، ن.؛ صفاهیه، ع.؛ سواری، ا. و رونق، م.ت.، 1391. بررسی آسیب شناسی آبشش بیاح (Liza abu) تحت تأثیر آلودگی آب خور موسی. پاتوبیولوژی مقایسه ای. دوره 9، شماره 2، صفحات 665 تا 674.
2
صابری، م.؛ عبدی، ر.؛ مروتی، ح.؛ رونق، م.ح. و دهقانی، ر.، 1393. مطالعه ضایعات ایجاد شده در بافت آبشش ماهی گاریز (Liza klunzigeri) تحت تأثیر آلودگی های صنعتی و فاضلاب شهری در سواحل غربی بندرعباس. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 6، شماره 3، صفحات 225 تا 231.
3
صادقی، پ. و کوهکن، ا.، 1394. مطالعه هیستوپاتولوژیک آبشش و کبد هامورماهی لکه زیتونی منقوط (Epinephels stoliczkae) تحت تأثیر کروم. فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان. دوره 3، شماره 3، صفحات 29 تا 50.
4
صادقی، پ.؛ کوهکن، ا. و خنیاگر، ف.، 1397. مطالعه آسیب شناسی بافتی و تجمع زیستی فلزات سنگین سرب و کروم در آبشش و کبد ماهی شوریده (Otolithes ruber) در دریای عمان. دوره 6، شماره 2، صفحات 151 تا 175.
5
قاسم زاده، ج.؛ نوروزی، ز.؛ سینایی، م.؛ کوهکن، ا. و زادعباس شاه آبادی، ح.، 1395. آسیب شناسی بافت کبد و آبشش در ماهی کفال خاکستری (Mugil cephalus) تغذیه شده با اسیدآمینه سیستیین در مواجهه با فلزات سنگین مس و روی. زیست شناسی دریا. دوره 8، شماره 4، صفحات 21 تا 30.
6
کشاورزی، ب.؛ ابراهیمی، پ.؛ مر، ف. و حمزه، م.ح.، 1392. زمین شیمی و توزیع فلزات سنگین در رسوبات ساحلی و دریایی خلیج چابهار. زمین شناسی کاربردی پیشرفته. دوره 7، شماره 3، صفحات 74 تا 81.
7
لقمانی، م.، 1395. بررسی تغییرات تراکم پرتاران زیرجزر و مدی خلیج چابهار با تأکید بر نقش فلزات سنگین مس و روی. مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 6، شماره 3، صفحات 10 تا 21.
8
لقمانی، م.، 1396. ارزیابی میزان فلزات مس و روی در چهار اسکله شهیدکلانتری، هفت تیر، شهیدبهشتی و کنارک در چابهار. چهارمین کنفرانس بین المللی برنامه ریزی و مدیریت محیط زیست. 6 صفحه.
9
Adeniran, A.; Adeyemo, O.K.; Emikpe, B. and Alarape, S., 2017. Organosomatic Indices, Haematological and Histological Assessment as Biomarkers of Health Status in Feral and Cultured Clarias gariepinus. African Journal of Biomedical Research. Vol. 20, No. 2, pp: 189-194.
10
Ale, A.; Bacchetta, C.; Rossi, A.S.; Galdopórpora, J.; Desimone, M.F.; Fernando, R. and Cazenave, J., 2018. Nanosilver toxicity in gills of a Neotropical fish: Metal accumulation, oxidative stress, histopathology and other physiological effects. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 148, pp: 976-984.
11
Au, D.W.T., 2004. The application of histocyto pathological biomarkers in marine pollution monitoring: a review. Marine pollution bulletin. Vol. 48, No. 9-10, pp: 817-834.
12
Bhuvaneshwari, R.; Padmanaban, K. and Babu Rajendran, R., 2015. Histopathological alterations in muscle, liver and gill tissues of zebra fish Danio rerio due to environmentally relevant concentrations of Organo chlorine Pesticides (OCPs) and heavy metals. International J of Environmental Research. Vol. 9, No. 4, pp: 1365-1372.
13
Bozzola, J.J. and Russell, L.D., 1992. Electron Microscopy. Jones and Bartlett Publishers, London.
14
Donnini, F.; Dinelli, E.; Sangiorgi, F. and Fabbri, E., 2007. A biological and geochemical integrated approach to assess the environmental quality of a coastal lagoon (Italy). Environment International. Vo. 33, pp: 919-928.
15
Fernandes, C.; Fontaínhas‐Fernandes, A.; Monteiro, S.M. and Salgado, M.A., 2007. Histopathological gill changes in wild leaping grey mullet (Liza saliens) from the Esmoriz‐Paramos coastal lagoon, Portugal. Environmental Toxicology. Vol. 22, No. 4, pp: 443-448.
16
Fernandes, M.N. and Mazon, A.F., 2003. Environmental pollution and fish gill morphology. In: Val, A.L. and Kapoor, B.G., (Eds.). Fish adaptations. Enfield, Science Publishers. pp: 203-231.
17
Flores-Lopes, F. and Thomaz, A., 2011. Histopathologic alterations observed in fish gills as a tool in environmental monitoring. Brazilian J of Biology.Vol.24, pp: 429-411.
18
Flores-Lopes,F. and Thomaz, A.T., 2011. Histopathologic alterations observed in fish gills as a tool in environmental monitoring. Brazilian Journal of Biology. Vol. 71, No. 1, pp: 179-188.
19
Fonseca, A.; Fernandes, L.S.; Fontainhas-Fernandes, A.; Monteiro, S. and Pacheco, F., 2016. From catchment to fish: Impact of anthropogenic pressures on gill histopathology. Science of the Total Environment. Vol. 31, pp: 921-916.
20
Hamzeh, M.A.; Shah-hosseini, M. and Beni, A.N., 2013. Effect of fishing vessels on trace metal contamination in sediments of three harbors along Iranian Oman Sea coast. Environmental monitoring and assessment. Vol. 185, No. 2, pp: 1791-1807.
21
Kalaiyarasi, T.; Jayakumar, N.; Jawahar, P.; Ahilan, B. and Subburaj, A., 2017. Histological changes in the gill and liver of marine spotted catfish, Arius maculatus from sewage disposal site, Therespuram off Thoothukudi, Southeast coast of India. Journal of Entomology and Zoology Studies. Vol. 5, No. 5, pp: 1710-1715.
22
Liu, X.J.; Luo, Z.; Li, C.H.; Xiong, B.X.; Zhao, Y.H. and Li, X.D., 2011. Antioxidant responses, hepatic intermediary metabolism, histology and ultrastructure in Synechogobius hasta exposed to waterborne cadmium. Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 74, No. 5, pp: 1156-1163.
23
Maori, T.A., 2017. Marine OMEGA-3 fatty acids in the prevention of cardiovascular disease. Fitoterapia. No. 123, pp: 51-58.
24
Mishra, A.K. and Mohanty, B., 2008. Acute toxicity impacts of hexavalent chromium on behavior and histopathology of gill, kidney and liver of the freshwater fish, Channa punctatus (Bloch). Environmental Toxicology and Pharmacology. Vol. 26, No. 2, pp: 136-141.
25
Mziray, P. and Kimirei, I.A., 2016. Bioaccumulation of heavy metals in marine fishes from Dar es Salaam Tanzania. Regional Studies in Marine Science. Vol. 7, pp: 72-80.
26
Nascimento, A.; Araujo, F.; Gomes, I.; Mendes, R. and Sales, A., 2012. Fish gills alterations as potential biomarkers of environmental quality in a eutrophized tropical river in south‐eastern Brazil. Anatomia, Histologia, Embryologia. Vol.14, pp: 119-146.
27
Nero, V.; Farwell, A.; Lister, A.; Van Der Kraak, G.; Lee, L.E.J.; Van Meer, T. and Dixon, D.G., 2006. Gill and liver histopathological changes in yellow perch (Perca flavescens) and goldfish (Carassius auratus) exposed to oil sands process affected water. Ecotoxicology & environmental safety. Vol. 63, No. 3, pp: 365-377.
28
Sadeghi, P.; Kazerouni, F.; Savari, A.; Movahedinia, A.; Safahieh, A. and Ajdari, D., 2015. Application of biomarkers in Epaulet grouper to assess chromium pollution in the Chabahar Bay and Gulf of Oman. Science of the Total Environment. Vol. 518, pp: 554-561.
29
Sadeghi, P.; Loghmani, M. and Afsa, E., 2019. Trace element concentrations, ecological & health risk assessment in sediment and marine fish Otolithes ruber in Oman Sea, Iran. Marine Pollution Bulletin. Vol. 140, pp: 248-254.
30
Salamat, N. and Zarie, M., 2016. Fish histopathology as a tool for use in marine environment monitoring.Comparative Clinical Pathology. Vol. 25, No. 6, pp: 1273-1278.
31
Santos, D.; Melo, M.R.S.; Mendes, D.C.S.; Rocha, I.K.; Silva, J.P.L.; Cantanhêde, S.M. and Meletti, P.C., 2014. Histological changes in gills of two fish species as indicators of water quality in Jansen Lagoon (São Luís, Maranhão State, Brazil). International J of environmental research and public health. Vol. 11, No. 12, pp: 12927-12937.
32
Schwaiger, J.; Wanke, R.; Adam, S.; Pawert, M.; Honnen, W. and Triebskorn, R., 1997. The use of histopathological indicators to evaluate contaminant-related stress in fish. Journal of Aquatic Ecosystem Stress and Recovery. Vol. 6, No. 1, pp: 75-86.
33
Shahsavani, D. and Saadatfar, Z., 2011. Structure of Lamellae and Chloride Cell in the Gill of Alosa Caspio Caspio (Clupeidae, Teleostei). American Journal of Applied Sciences. Vol. 8, No. 6, pp: 535-539.
34
Subburaj, A.; Jawahar, P.; Jayakumar, N.; Srinivasan, A. and Ahilan, B., 2018. Acute toxicity bioassay of Malathion (EC 50%) on the fish, Oreochromis mossambicus (Tilapia) and associated histological alterations in gills. Journal of Entomology and Zoology Studies. Vol. 6, No. 1, pp: 103-107.
35
Valinassab, T.; Daryanabard, R.; Dehghani, R. and Pierce, G.J., 2006. Abundance of demersal fish resources in the Persian Gulf and Oman Sea. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. Vol. 86, No. 6, pp: 1455-1462.
36
Velma, V. and Tchounwou, P.B., 2010. Chromium-induced biochemical, genotoxic and histopathologic effects in liver and kidney of goldfish, Carassius auratus. Mutation Research/Genetic Toxicology and Environmental Mutagenesis. Vol. 698, No. 1, pp: 43-51.
37
Winkaler, E.U.; Silva, A.D.G.; Galindo, H.C. and Martinez, C.D.R., 2001. Biomarcadores histológicos e fisiológicos para o monitoramento da saúde de peixes de ribeirões de Londrina, Estado do Paraná. Acta Scientiarum. Vol. 23, No. 2, pp: 507-514.
38
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین نرخ رشد، مرگ و میر و نسبت بهرهبرداری ماهی تون منقوش (Auxis thazard ) در آبهای شمال خلیجفارس و دریای عمان (محدوده استان هرمزگان)
ماهی تون منقوش یکی از گونه های خانواده تون ماهیان در شمال خلیج فارس و دریای عمان است. به منظور دستیابی به الگوی بهره برداری مناسب از ذخایر این گونه نیاز است که برخی شاخص های پویایی شناسی جمعیت آن مورد بررسی و سنجش قرار گیرد. اطلاعات مورد نظر به صورت تصادفی ساده از سه تخلیه گاه عمده اصلی بندرسیریک، بندرعباس و بندرلنگه در استان هرمزگان از فروردین تا اسفند 1395 جمع آوری شدند. میانگین طول چنگالی ماهیان تون منقوش 33/9 سانتی متر بود. مقادیر a و b در رابطه طول- وزن به ترتیب 6-10× 2 و 3/3 برآورد شدند که بیان کننده رشد آلومتریک این گونه می باشد. پیراسنجههای رشد L∞ ،K و t0 به ترتیب 53/2 سانتی متر، 0/8 بر سال و 0/17- سال به دست آمدند. طول چنگالی ماهی تون منقوش در پایان یک سالگی، دوسالگی و سهسالگی به ترتیب 32/3، 43/8 و 48/1 سانتی متر بود. شاخص رشد برابر با 7/7 محاسبه شد که با سایر مطالعات صورت گرفته مطابقت داشت. مرگ ومیر کل، طبیعی و صیادی به ترتیب برابر با 2/45، 1/03 و 1/42 بر سال بودند. مقادیر Fopt و Flimit به عنوان نقاط مرجع زیستی به ترتیب 0/52 و 0/68 بر سال محاسبه شدند. نسبت بهره برداری برای این گونه 0/58 تخمین زده شد.
http://www.aejournal.ir/article_112957_e19b9019e3ec524992cdbe5c419cfa5f.pdf
2020-09-22
131
138
10.22034/aej.2020.112957
ماهی تون منقوش
پیراسنجههای رشد
مرگومیر
نقاط مرجع زیستی
خلیجفارس و دریای عمان
محمد
درویشی
m.darvishi70@yahoo.com
1
پژوهشکده اکولوژی خلیجفارس و دریای عمان، موسسۀ تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
سیامک
بهزادی
s_behzady@yahoo.com
2
پژوهشکده اکولوژی خلیجفارس و دریای عمان، موسسۀ تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
علی
سالارپوری
salarpouri@pgoseri.ac.ir
3
پژوهشکده اکولوژی خلیجفارس و دریای عمان، موسسۀ تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
محمد
مومنی
msmk63@yahoo.com
4
پژوهشکده اکولوژی خلیجفارس و دریای عمان، موسسۀ تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، م.، 1385. مطالعات مستمر هیدرولوژی و هیدروبیولوژی خلیجفارس و تنگه هرمز (آب های محدوده استان هرمزگان). مؤسسه تحقیقات شیلات ایران (موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور). تهران. 154 صفحه.
1
درویشی، م.، 1395. ارزیابی توسعه صید سنتی ماهی هوور (Thunnus tonggol) با استفاده از شاخص های دینامیک جمعیت در خلیج فارس و دریای عمان (آب های استان هرمزگان). پایان نامه دکتری. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 192 صفحه.
2
Abdussamad, E.M.; Pillai, P.P.; Kasim, H.M. and Balasubramaniam, T.S., 2005. Fishery and population characteristics of coastal tunas at Tuticorin. Journal Marine Biology. India. Vol. 1, pp: 50-56.
3
Abussamad, E.M.; Koya, K.P.; Rohith, P. and Kuriakaose, S., 2013. Neritic tuna fishery along the Indian coast and biology and population characteristics of longtail and frigate tuna. IOTC–WPNT03. Vol. 1, pp: 2-8.
4
Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology, South Asian publishers. 157 p.
5
Cadima, E.L., 2003. Fish Stock Assessment Manual. FAO fisheries Technical Paper No. 393. Rome. 161 p.
6
Dudley, R.G.; Aghanashinikar, A.P. and Brothers, E.B., 1992. Management of the Indo-Pacific Spanish mackerel (Scomberomorus commerson) in Oman. Fisheries Research. Vol 15, pp: 17-43.
7
Froese, R. and Binohlan, C., 2000. Empirical relationships to estimate asymptotic length, length at first maturity and length at maximum yield per recruit in fishes, with a simple method to evaluate length frequency data. Journal of Fis h Biology. Vol 56, pp: 758-773.
8
Gayanilo, F.C.; Sparre, P. and Pauly, D., 1996. The FAO ICLARM Stock Assessment Tools (FiSAT), User''s guide. (Fisheries). FAO Computerized Information Series. No. 8. ROME, ITALY. 126 p.
9
Ghosh, S.; Pillai, N.G.K. and Dhokia, H.K., 2010. Fishery, population characteristics and yield estimates of coastal tunas at Veraval. Indian Journal of Fisheries. Vol 2, pp: 7-13.
10
Ghosh, S.; Sivadas, M.; Abdussamad, E.M.; Rohit, P.; Koya, K.P.; Joshi, K.K. and Sebastine, M., 2012. Fishery, population dynamics and stock structure of frigate tuna Auxis thazard (Lacepede, 1800) exploited from Indian waters. Indian Journal of Fisheries. Vol. 59, pp: 95-100.
11
Haddon, M., 2011. Modelling and QuantitativeMethods in Fisheries. 2nd edn, Chapman and Hall. 449 p.
12
Hamidi, F.; Jaliadi, M. and Rizal, M., 2018. Structure of size and growth pattern of frigate mackerel (Auxis thazard) in fish landing base of ujong baroh meulaboh. International Journal of Fisheries and Aquatic Research. Vol. 3, pp: 16-21.
13
Hartaty, H. and Setyadji, B., 2016. Parameter Populasi Ikan Tongkol Krai (Auxis thazard) Di Perairan Sibolga dan Sekitarnya. Journal Bawal Widya Riset Perikanan Tangkap. Vol 3, pp: 183-190.
14
Herera, M. and Pierre, L., 2009. Status of IOTC databases for neritic tuna. IOTC-2009-WPDCS-06. 46 p.
15
Indian Ocean Tuna Commission (IOTC)., 2014. Report of the Fourth Session of the IOTC Working Party on Neritic Tunas Phuket, Thailand WPNT04– R[E]. 58 p.
16
Iswarya, D. and Sujatha, K., 2012. Fishery and some aspects of reproductive biology of two coastal species of tuna, Auxis thazard (Lacepède, 1800) and Euthynnus affinis (Cantor, 1849) off north Andhra Pradesh, India. Indian Journa Fisheries. Vol 4, pp: 67-76.
17
Joseph, L.; Maldeniya, R. and Van der Knaap, M., 1986. Fishery and age and growth of kawakawa (E. affinis) and frigate tuna (A. thazard). In: Collective Volume of Working Documents presented at the Expert Consultation on Stock Assessment of Tunas in the Indian Ocean, Colombo, Sri Lanka, 4-8 December Indo-Pacific Tuna Development Management Programme. Vol. 2, pp: 113-123.
18
Kasim, H.M., 2002. Fishery, growth, mortality rates and stock assessment of Auxis thazard (Lacepede) along Tuticorin coast, Gulf of Mannar. In: Ayyappan, S., Jena, J. K. and Mohan Joseph, M. (Eds.), The Fifth Indian Fisheries Forum Proceedings, Bhubaneswar. Orissa. 355 p.
19
Lessen, H. and Medley, P., 2000. Virtual population analysis. Apractical manual for stock assessment. FAO fisheries technical paper No. 400, Rome, FAO. 129 p.
20
Patterson, K., 1992. Fisheries for pelagic species: An empirical approach to management targets. Review in Fish Biology and Fisheries. Vol. 2, pp: 321-338.
21
Pauly, D. and Morgan, G.R., 1987. Length-Based method in fisheries research. International Center for Living Aquatic Resources Management.Kuwait Institute for Science Research. 468 p.
22
Pauly, D. and Munro, J., 1984. Once more on the comparision of growth in fish and invertebrates, Fishbyte. 2,21.
23
Pauly, D., 1980. On the interrelationships between natural mortality, growth parameters, and mean environmental temperature in 175 fish stocks. Journal Du Conseil International Pour L''Exploration De La Mer. Vol. 39, pp: 175-192.
24
Pauly, D., 1984. Fish population dynamics in tropical waters: A manual for use with programmable calculators, ICLARM Stud. Rev. Vol. 8, pp: 325-356.
25
Pauly, D., 1987. A review of the ELEFAN system for analysis of length-frequency data in fish and aquatic invertebrates. pp: 7-34. In D. Pauly and G. R. Morgan (eds). Length-based methods in Fisheries research. ICLARM conference proceedings. 468 p.
26
Pillai, P.P.; Pillai, N.G.; Sathianandan, K.T.V. and Kesavan Elaythu, M.N.K., 1993. Fishery Biology and stock assessment of Scomberomorous commerson (lacepede 1800) from the South_West Coast in India.IPTP Collective. Vol. 8, pp: 56-61.
27
Roberts, E.P.; Eggleston, D. and James, G.D., 1997. Frigate tuna Auxis thazard in New Zealand waters (note). Fisheries Research Division, Ministry of Agriculture and Fisheries. Wellington, New Zealand.
28
Tao, Y.; Mingrul, C.; Jianguo, D.; Zhenbin, L. and Shengyun, Y., 2012. Age and growth changes and population dynamics of the black pomfret (Parastromateus niger) and the frigate tuna (Auxis thazard) in the Taiwan Strait. Department of Oceanography, Xiamen University, Xiamen 361005, China Lat. Am. Journal Aquatic Research. Vol 3, pp: 649-656.
29
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی خطر فلزات سنگین سرب، مس و کادمیوم در بافت عضله و پوست بزماهی زرد جامه (Upeneus sulphureus) بندر ماهشهر
سمیت بالای فلزات سنگین در محیط زیست، خاصیت انباشتگی در بافت های آبزیان و انتقال به سایر مصرف کنندگان لزوم پایش مکانی و زمانی آن ها را ایجاب می کند. مطالعه حاضر در زمستان سال 1396 با هدف ارزیابی خطر فلزات سنگین سرب، مس و کادمیوم در بافت عضله و پوست بزماهی زرد جامه (Upeneus sulphureus) بندر ماهشهر انجام شد. مطالعه بر روی 30 نمونه بزماهی زرد جامه صید شده در فصل زمستان (اسفند ماه) از بندر ماهشهر صورت گرفت. نمونه ها پس از آماده سازی توسط دستگاه جذب اتمی مدل 220 Varian spectra تعیین غلظت شدند. تجزیه و تحلیل داده ها توسط نرم افزار 22 SPSS، نمودار 2013 Excel، آزمون های توکی و کولموگراف–اسمیرنوف انجام شد. میانگین غلظت های به دست آمده برای سرب، مس و کادمیوم در پوست به ترتیب 0/015±0/017، 0/042±0/510 و 0/037±0/045 و در عضله به ترتیب 0/004±0/008، 0/025±0/281 و 0/014±0/016 میلی گرم بر کیلوگرم بود. در هر دو بافت مورد مطالعه، غلظت هر سه فلز از استانداردهای WHO، FAO، NHMRC و UKMAFF کم تر بود. از آن جا که شاخص ریسک HQ برای هر سه فلز کم تر از 1 به دست آمد. بنابراین بز ماهی زرد جامه از نظر ریسک پذیری خطری ندارد ولی به دلیل وجود مقادیر مشخص از فلزات باید پاره ای از ملاحظات لحاظ گردد.
http://www.aejournal.ir/article_113053_2f50c4e07c0433c6050c6cbeeea2fe2a.pdf
2020-09-22
139
144
10.22034/aej.2020.113053
آلودگی
پوست
عضله
فلزات سنگین
بزماهی زردجامه
مینا
میرزایی
miinaa70@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
تورج
ولی نسب
t_valinassab@yahoo.com
2
موسسۀ تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
رضا
حاجی سید محمد شیرازی
shirazi.iau@gmail.com
3
گروه مهندسی محیط زیست گرایش آب و فاضلاب، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
تهمتن مقدم، ح.، 1395. تجمع زیستی فلزات سنگین سرب، روی و مس در بافت عضله و کبد ماهی شانک باله زرد در آب های سواحل دیلم در شمال خلیح فارس. نشریه پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. دوره 4، شماره1، صفحات 43 تا 57.
1
جلالی جعفری، ب. و آقازاده مشگی، م.، 1385. مسمومیت ماهیان در اثر فلزات سنگین آب و اهمیت آن در بهداشت عمومی. انتشارات مان کتاب. چاپ اول.
2
چاکری، ر.؛ سجادی، م.م.؛ کامرانی، ا. و آقاجاری، ن.، 1394. تعیین میزان غلظت سرب و کادمیوم در بافت های عضله و کبد ماهی طلال (Rastrelliger kanagutra) در آب های خلیج فارس. مجله علمی شیلات ایران. سال 24، شماره 2، صفحات 115 تا 124.
3
حسینی، م.؛ باقرنبوی، س.م.؛ گلشنی، ر. و نبوی، س.ن.، 1394. آلودگی فلزات سنگین (سرب، نیکل، مس، کبالت و کادمیوم) در رسوب و بافت های کبد و ماهیچه کفشک ماهی (Psettodes erumei) در استان بوشهر، خلیج فارس. نشریه پژوهش های جانوری. دوره 24، شماره 4، صفحات 441 تا 449.
4
خراسانی، ن.؛ حسینی،س.م.؛ پورباقر، ه.؛ حسینی، س.و. و افلاکی، ف.، 1392. اندازه گیری برخی فلزات سنگین در ماهی شوریده Otolithes ruber (مطالعه موردی بندر ماهشهر). نشریه محیط زیست طبیعی. مجله منابع طبیعی ایران. دوره 66، صفحات 181 تا 190.
5
خیرور، ن. و دادالهی سهراب، ع.، 1389. غلظت فلزات سنگین در رسوبات و ماهی شیربت (Brbus grypus) در اروندرود. علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 12، شماره 2، صفحات 123 تا 131.
6
دادخواه، پ.؛ چمنی، ع. و مرتضوی، ث.، 1397. ارزیابی خطر عناصر سرب، کادمیوم و روی در دو گونه ماهی خوراکی کوسه باله سیاه کوچک (Carcharhinus limbatus) و ماهی هامور (Epinephelus coioides) در خلیج فارس. فصلنامه پژوهش در بهداشت محیط. دوره 4، شماره 2، صفحات 85 تا 93.
7
دانشیار، ح.؛ پناه پور، ا. و قنواتی، ن.، 1395. بررسی غلظت سرب، نیکل و جیوه در پساب و عضله سه گونه ماهی گل خورک، ساردین و شوریده در خورموسی. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. دوره 8، شماره 29، صفحات 59 تا 68.
8
صادقی، پ. و دربازی، م.، 1395. بررسی غلظت فلزات سنگین مس، نیکل و روی در Acanthopleura vaillantii سواحل خلیج چابهار. نشریه بوم شناسی آبزیان. دوره 6، شماره 3، صفحات 115 تا 123.
9
صدوق نیری، ع.؛ نیک پور، ی.؛ رجب زاده، ا.؛ محبوبی صوفیانی، ن. و احمدی، ر.، 1389. اندازه گیری فلزات سنگین کادمیوم، نیکل، کبالت، مس و سرب در بافت های ماهی صبور (Tenualosa ilisha) در شمال غرب خلیج فارس و رابطه آن با طول و وزن. نشریه علوم آبزیان. دوره 1، شماره1، صفحات 73 تا 87.
10
صفاهیه، ع.؛ ذوالقرنین، ح.؛ سالاری علی آبادی، م.ع. و یاوری، و.، 1388. تجمع کادمیوم، مس و آهن در بافت های ماهی شبه شوریده (Johnius belangerii) در سواحل شمالی خلیج فارس. نشریه شیلات. دوره 3، شماره 3، صفحه 1 تا 8.
11
عسگری ساری، ا.؛ جواهری بابلی،م.؛ محجوب،ث. و ولایت زاده، م.، 1391. میزان فلزات سنگین (جیوه، سرب و کادمیوم) در عضله ماهی شوریده در بنادر صیادی آبادان و بندرعباس. مجله علمی شیلات ایران. سال 21، شماره3، صفحات 99 تا 106.
12
ملماسی، س.؛ جوزی، س.ع.؛ منوری، س.م. و جعفریان مقدم، ا.، 1389. بررسی اثرات زیست محیطی صنایع پتروشیمی تولیدکننده PET-PTA (مطالعه موردی: منطقه ویژه اقتصادی ماهشهر). مجله انسان و محیط زیست. دوره 8، شماره 4، صفحات 73 تا 81.
13
ولی نسب، ت.، 1395. تعیین توده زیستی کفزیان به روش مساحت چاروب بشره در آب های خلیج فارس و دریای عمان. گزارش نهایی پروژه تحقیقاتی.
14
Ahalya, N.; Ramachandra, T. and Kanamadi, R., 2003. Biosorption of heavy metals.Research Journal of Chemistry and Environment. Vol. 7, No. 2, pp. 71-79.
15
Al-Yousof, M.H.; El-Shahawi, M.S. and Al-Ghais, S.M., 2000. Trace metals in liver, skin and muscle of (Lethrinus lentjan) fish species in relation to body length and sex. Science total environment. Vol. 256, No. 2-3, pp: 87-94.
16
Authman, M.M.; Zaki, M.S.; Khallaf, E.A. and Abbas, H.H., 2015. Use of fish as bioindicator of the effects of heavy metals pollution. Journal of Aquaculture Research & Development. Vol. 6, No. 4, pp: 1-13.
17
Birungi, Z.; Masola, B.; Zaranyika, M.; Naigaga, I. and Marshall, B., 2007. Active biomonitoring of trace heavy metals using fish (Orechromis niloticus) as bioandicator species, The case of Nakivubo wetland along Lake Victoria. Physics and Chemistry of the Earth, parth A/B/C. Vol. 32, No. 15-18, pp: 1350-1358.
18
Bosch, A.C.; O´Neill, B.; Sigge, G.O.; Kerwath, S.E. and Hoffman, L.C., 2016. Heavy metals in marine fish meat and consumer health: a review. Journal of the science of Food and Agriculture. Vol. 96, No. 1, pp: 32-48.
19
El-Moselhy, K.M.; Othman, A.; El-Azem, H.A. and El-Metwally, M., 2014. Bioaccumulation of some heavy metals in some tissues of fish in the Red Sea, Egypt. Egyptian J of Basic and Applied Sciences. Vol. 1, No. 2, pp: 97-105.
20
Filazi, A.; Baskaya, R. and Kum, C., 2003. Metal concentration in tissues of the Black Sea fish Mugil auratus from Sinop- Icliman, Turkey. Human & Experimental Toxicology. Vol. 22, No. 2, pp: 85-87.
21
Makedoski, L. and Peycheva, K., 2017. Determination of heavy metals in selected black sea fish species. Food Control Journal. Vol. 72, pp: 313-318.
22
Moopam, R., 1999. Manual of oceanographic observation and pollutant analyses method. 3th ed, kuwit. 321 p.
23
Pourang, N.; Nikouyan, A. and Dennis, J.H., 2005. Trace element concentration in fish, sediments and water from northern part of the Persian Golf. Environmental monitoring and assessment. Vol. 109, No. 1-3, pp: 293-316.
24
Randall, J.E. and Kulbicki, M., 2005. A Review of the Goatfishes of the Genus Upeneus (perciformes: Mullidae) from New Caledonia and the Chesterfield Bank, with a new Species anf Four New Records.
25
Rooney, P., 2009. Factors that influence the petrochemical industry in the Middle East.
26
Svobodova, Z.; Aelechovska, O.; Machova, J. and Randak, T., 2002. Content of arsenic in market-ready Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss). Acta Veterinaria Brno. Vol. 71, pp: 361-367.
27
Venugopal, V. and Shahidi, F., 1996. Stucture and composition pf fish muscle. Food Reviews International. Vol. 12, No. 2, pp: 175-197.
28
Uysal, K.; Emre, Y. and Kose, E., 2008. The determination of heavy metal accumulation ratio in muscle, skin and gills of some migratory fishspecies by inductively coupled plasma optical emission spectrometry in beymelek lagoon (Antalya/Turkey). Microchemical Journal. Vol. 90, No. 1, pp: 67-70.
29
Vas, P.; Gordon, J.M.; Fielden, P.R. and Varnell, J., 1993. The trace metal ecology of Ichthyfouna in Rockal through, North-Eastern Atlantic.Marine Pollution Bulletin. Vol. 26, No. 11, pp: 607-612.
30
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین بیومارکرهای خونی آلودگی سرب در خلیج گرگان با استفاده از شاخص های خون شناسی گاوماهی لکه دار (Neogobius melanostomus, Pallas 1814)
تحقیق حاضر، جهت مهیا کردن اطلاعات پایه ای از آسیب های اکوفیزیولوژیکی (شاخص های خونی) گاوماهی لکه دار در شرایط آزمایشگاهی و محیطی آلودگی سرب و در نهایت طراحی بیومارکرهای خونی ردیابی آلودگی سرب، در خلیج گرگان انجام گردید. در مطالعات آزمایشگاهی، 400 قطعه گاوماهی لکه دار با میانگین وزنی 7/16±35 گرم به طور زنده صید شده و به مدت 14 روز در معرض غلظتهای 0، 3/75، 7/5 و 15 میلی گرم بر لیتر سرب قرار داده شدند. پس از اتمام آزمایش، از ماهیان نمونه های خون و کبد تهیه شده و مورد آنالیزهای خون شناسی و سم شناسی قرار داده شدند. در تست میدانی، نمونه های ماهی، آب و رسوب، از 4 منطقه بهنام خزینی1، خزینی2، قره سو و گرگانرود تهیه گردید. علاوه بر سنجش سرب در آب، رسوب و بافت کبد، نمونه های خون ماهیان نیز، مشابه آن چه در مورد شرایط آزمایشگاهی ذکر شد، آنالیز گردید. طبق نتایج، از بین پارامترهای خون شناسی گاوماهی لکه دار، مونوسیت، گلبول قرمز، هموگلوبین و MCHC، یک همبستگی مثبت و قابل توجه ای و لنفوسیت و MCV، یک همبستگی منفی و قابل توجه ای با آلودگی سرب تجمع یافته در کبد گاوماهیان در شرایط آزمایشگاهی نشان داد و در شرایط محیطی، مونوسیت یک همبستگی مثبت و معنی داری و ائوزینوفیل یک همبستگی منفی و معنی داری با آلودگی سرب کبد گاوماهیان در شرایط محیطی نشان داد. نوتروفیل نیز یک روند افزایشی را با تغییرات آلودگی سرب کبد نشان داد، ولی این تغییرات معنی دار نبود. در مجموع ، از بین شاخص های خونی گاوماهی لکه دار، درصد مونوسیت خون به دلیل نشان دادن همبستگی بالا و روند یکسان در هر دو شرایط محیطی و آزمایشگاهی (0/05>P)، به عنوان مؤثرترین و کارآمدترین بیومارکرخونی آلودگی سرب در گاو ماهی لکه دار پیشنهاد گردید.
http://www.aejournal.ir/article_113071_5f4735735a411f96480a67be57eecd5f.pdf
2020-09-22
145
154
10.22034/aej.2020.113071
بیومارکر خونی
آلودگی سرب
خلیج گرگان
Neogobius melanostomus
فخریه
امیدی
fakhriyeh.omidi90@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
LEAD_AUTHOR
حجت الله
جعفریان
hojat.jafaryan@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
AUTHOR
رحمان
پاتیمار
rpatimar@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
AUTHOR
محمد
هرسیج
m_harsij80@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
AUTHOR
حامد
پاک نژاد
hkolangi@gmail.com
5
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
خبازی، م.؛ هرسیج، م.؛ هدایتی، ع.؛ گرامی، م. و غفاری فارسانی، ح.، 1394. تأثیر غلظت های تحت کشنده فلز مس (CuSo4) در پارامترهای هماتولوژیک خون قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله بوم شناسی آبزیان. دوره4، شماره 4، صفحات 1 تا 7.
1
منصوری، ب.، 1395. مطالعه و بررسی منابع آلاینده خلیج گرگان. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. مرکز تحقیقات ذخائر آبزیان آب های داخلی. 43 صفحه.
2
وابونیان، ع.، 1391. تأثیر غلظت های تحت کشنده کادمیم بر برخی پارامترهای آنزیمی، هماتولوژیک و تجمع زیستی در کبد ماهی شانک زرد باله (Acantopagrus latus). پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر. 104 صفحه.
3
هدایتی، ع.، 1390. تعیین بیومارکرهای آلودگی جیوه با استفاده از شاخص های اکوفیزیولوژیک کبد ماهی شانک زرد باله (Acanthopagrus latus). پایان نامه دکتری، دانشکده علوم دریایی گروه بیولوژی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر. 126 صفحه.
4
Adhikari, S.; Sarkar, B.; Chatterjee, A.; Mahapatra, C.T. and Ayyappan, S., 2004. Effects of cypermethrin and carbofuran on certain hematological parameters and prediction of their recovery in a freshwater teleost; Labeo rohita (Hamilton). Ecotoxicol. Environ. Saf. Vol. 58, pp: 220-226.
5
Affonso, E.G.; Polez, V.L.P.; Correa, C.; Mazon, A.F.; Araujo, M.R.R.; Moraes, G. and Ratin, F.T., 2002. Blood parameters and metabolites in the teleosts fish Colossoma macropomum exposed to sulfide or hypoxia. Comp. Biochem. Physiol., Part C: Toxicol. Pharmacol. Vol. 133, No. 3, pp: 375-382.
6
Al-Ghadban, A.N.; Massoud, M.S. and Al-Abdali, F., 1996. Bottom sediments of the Persian Gulf: I. sedimentological characteristics. Kuwait J. Sci. Eng. Vol. 23, No. 1, pp: 69-87.
7
Begum, G., 2004. Carbofuran insecticide induced biochemical alterations in liver and muscle tissues of the fish Clarias batrachus (Linn.) and recovery response. Aquat. Toxicol. Vol. 66, No. 1, pp: 83-92.
8
BelaZutshi, S.G. and RaghuPrasad, R., 2010., Alteration in hematology of Labeo rohita under stress of pollution from Lakes of Bangalore, Karnataka, India. Environ. Monit. Assess. Vol. 168, No. 1-4, pp: 11-19.
9
Bryan, G.W., 1976. Some effects of heavy metal tolerance in aquatic organisms. InEffects of pollutants on aquatic organisms. Edited by APM. Lockwood. Cambridge University Press,Cambridge, England. pp: 7-34.
10
Cataldi, E.; DiMarco, P.; Mandich, A. and Catandella, S., 1998. Serum parameters of Adriatic sturgeon Acipenser naccarii ( pisces: Acipenseriformes): effect of tempreture and stress. Comp. Biochem. Physiol., Part A: Mol. Integr. Physiol. Vol. 121, No. 4, pp: 351-354.
11
Corkum, L.D. ; Sapota, M.R. and Skora, K.E., 2004 .The round goby, Neogobius melanostomus, a fish invader on both sides of the Atlantic Ocean. Biol Invasion. Vol. 6, No. 2, pp: 173-181.
12
Dacie, J.V. and Lewis, S. M., 2001., Practical Haematology. Churchill Livingstone. London. 633 p.
13
Demirak, A.; Yilmaz, F.; Levent Tuna, A. and Ozdemi, N., 2006. Heavy metals in water, sediment and tissues of (Leuciscus cephalus) from a stream in southwestern Turkey. Chemosphere. Vol. 63, No. 9, pp: 1451-1458.
14
Dharam, S.; Kamlesh, N.; Trivedi, S.P. and Sharma, Y.K., 2008. Impact of copper on haematological profile of freshwater fish, Channa punctatus. Ecotoxicol. Environ. Saf. Vol. 29, No. 2, pp: 253-257.
15
Elia, A.C.; Galarini, R.; Taticchi, M.; Dorr, A.J. and Mantilacci, L., 2003. Antioxidant responses and bioaccumulation in Ictalurus melas under mercury exposure. Ecotoxicol. Environ. Saf. Vol. 55, No. 2, pp: 162-167.
16
Evans, G.O., 2009. Animal Hematotoxicology. Chemical Rubber Company Press. 204 p.
17
Gad, S.C., 2007. Animal Models in Toxicology. Chemical Rubber Company Press. 950 p.
18
Hesp, S.A., Potter, I.C. and Hall, N.G., 2004. Reproduction biology and protandrous hermaphroditism in Acanthopagrus latus. Environ. Biol. Fishes. Vol. 70, No. 3, pp: 252-272.
19
Holdway, D.A., 1996. The role of biomarkers in risk assessment. Hum. Ecol. Risk Assess. Vol. 2, No. 2, pp: 263-267.
20
Houston, H., 1990. Review: are the classicalhematological variables acceptable indicators forfish health? Trans. Am. Fish. Soc. Vo. 126, No. 6, pp: 879-894.
21
Javad, M. and Usmani, N., 2015. Impact of Heavy Metal Toxicity on Hematology an Glycogen Status of Fish: A Review. Natl. Acad. Sci. Vol. 85, No. 4, pp: 889-900.
22
Kar, D.; Sur, P.; Mandal, S.K.; Saha, T. and Kole, R.K., 2008. Assessment of heavy metal pollution in surface water. Int. J. Environ. Sci. Technol. Vol. 5, No. 1, pp: 119-124.
23
Kim, J.H. and Kang, J.H., 2015. The lead accumulation and hematological findings in juvenile rock fish Sebastes schlegelii exposed to the dietary lead (II) concentrations. Ecotoxicol. Environ. Saf. Vol. 115, pp: 33-39.
24
Lim, C.; Klesius, P.H.; Li, M.H. and Robinson, E.H., 2000. Interaction between dietary levels of iron and vitamin C on growth, hematology, immune response and resistance of channel cat fish (Ictalurus punctatus) to Edwardsiella ictalury challenge. Aquaculture. Vol. 185, No. 3-4, pp: 313-327.
25
Lohner, T.W.; Reash, R.J.; Willet, V.E. and Rose, L.A., 2001. Assessment of tolerant sun fish populations (Lepomis sp.) inhabiting selenium-laden coal ash effuents. Ecotoxicol. Environ. Saf. Vol. 50, No. 3, pp:203-216.
26
Maheswaran, R.; Devapaul, A.; Muralidiharan, S.; Velmurugan, B. and Ignacimuthu, S., 2008. Hematological studies of fresh water fhsh, Claris batrachus (L) exposed to mercuric chloride. Int.J. Integr. Biol. Vol. 2, No. 1, pp: 49-54.
27
Makokha, A.O.; Mghweno, L.R.; Magoha, H.S.; Nakajugo, A. and Wekesa, M., 2011. The effects of environmental lead pollution in kisumu, Mwanza and Kampala. Environ. Eng. J. Vol. 4, No. 1, pp: 133-140.
28
Moopam, K., 1999. Manual of Oceanographic Observations and Pollutant Analysis Methods. Kuwait. 321 p.
29
Nelson, J., 2006. Fishes of the World. department of biological sciences. University of Alberta, Edmonton. Alberta, T6G2E9, Canada. 601 p.
30
Ololade, I.A. and Oginni, O., 2010. Toxic stress and hematological effects of nickel on African catfish, Clarias gariepinus, fingerlings. J. Environ. Chem. Ecotoxicol. Vol. 2, No. 2, pp: 014-019.
31
Safahieh, A.; Ali Akbar, H; Ahmad, S. and Abdolali, M., 2010. Experimental approaches of hematotoxic and immunotoxic effects of mercury chloride on yellow fin sea bream (Acanthopagrus latus). Am.-Eurasian J. Toxicol. Sci. Vol. 2, No. 3, pp: 169-176.
32
Shah, S.L. and Altindag, A., 2004. Haematological parameters of tench, Tinca tinca after acute and chronic exposure to lethal and sublethal mercury treatments. Bull. Environ. Contam. Toxicol. Vol. 73, pp: 911-918.
33
Stepanova, T.G., 2001. Some feature of repruduction and growth of gobies in the northern Caspian. In Ecology of young fish and problems of Caspian Fish Reproduction. VNIRO Ed, Moscow. pp: 268-276.
34
Tavares-Dias, M.; Ferreira, J.S.; Affonso, E.G.; Ono, E.A. and Martins, M.L., 2011.Toxicity and Effects copper sulfat on Parasitic Control and Hematological Response of Tambaque (Colossoma macropomum). Bol. Inst. Pesca. Vol. 37, No. 4, pp: 355-365.
35
Tishanova, V. and Ilieva, N., 1994. Joint influence of Zn and Pb on some hematological indices of the common carp (Ciprinus carpio L.). Annu. Sci. Stud., Univ. Sofia. Vol. 83, No. 1, pp: 119-123.
36
Tort, L. and Torres, P., 1988. The effects of sublethal concentrations of cadmium on haematological parameters in the dog fish Scyliorhinus canicula. J. Fish Biol. Vol. 32, No. 2, pp: 277-282.
37
Turkmen, M.; Turkmen, A.; Tepe, Y. and Ates, A., 2009. Determination of metalsin fish species from Aegean and Mediterranean seas. Food Biochem. Vol. 113, No. 1, pp: 233-237.
38
Vinodhini, R. and Narayanan, M., 2009. The impact of toxic heavy metals on the hematological parameters in common carp (Cyprinus carpio L.). Iran. J. Environ. Health Sci. Eng. Vol. 6, No. 1, pp: 23-29.
39
Zaki, M.S.; Moustafa, S.; Rashad, H. and Sharaf, N., 2008. Assessment of the hazardous effect of lead pollution on Oreochromis niloticus including haematological, biochemical and immunological parameters. Am.-Eurasian J. Agric. Environ. Sci. Vol. 3, pp: 91-95.
40
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی مورفومتریک اتولیت های برخی از گونه های تجاری ماهیان آب های فریدون کنار
این مطالعه به منظور بررسی شکل و خصوصیات ریخت شناسی اتولیت های تعدادی از ماهیان اقتصادی آب های فریدون کنار انجام گردید.در این تحقیق، 12 گونه از ماهیان تجاری آب های فریدونکنار تهیه و خصوصیات بیومتریک آن ها مورد بررسی و اتولیت ساجیتای آن ها خارج شد. این گونه ها متعلق به خانواده های کپورماهیان شامل ماهی کپور نقره ای (Hypophthalmichthys molitrix)، ماهی کپورعلف خوار (Ctenopharyngodon idella)، ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio)، ماهی سیم (Abramis brama)، ماهی سفید (Rutilus kutum)، ماهیکپورسرگنده(Hypophthalmictys nobilis)، خانواده کفال ماهیان شامل ماهی کفال پوزه باریک (Chelon saliens)،خانواده اردک ماهیان شامل اردک ماهی (Esox lucius)، خانواده سوف ماهیان شامل ماهی سوف معمولی (Sander luciopera)، خانواده شگ ماهیان شامل ماهی کیلکا آنچوی (Clupeonella engrauliformis) و ماهی کیلکا زالون (Clupeonella grimmi) و از خانواده آزادماهیان ماهی قزل آلای رنگینکمان (Oncorhynohus mykiss) بودند. سپس، شکل، طول، عرض و ضخامت اتولیت های راست و چپ بررسی شد. نتایج نشان دادند بزرگ ترین اتولیت با طول 8/27 میلی متر متعلق به گونه Chelon saliens و کوچک ترین اتولیت با طول 2/15 میلی متر متعلق به گونه Hypophthalmichthys molitrix بودند. از آن جایی که این ماهی ها بزرگ ترین و کوچک ترین ماهی های مورد مطالعه نبودند، پس ارتباط معنی داری بین اندازه ماهی و اتولیت نشان داده نشد. شکل و اندازه اتولیت در این چند خانواده بسیار متنوع بود و در دو گونه از جنس Clupeonella شامل lupeonella engrauliformis وClupeonella grimmi یکسان بود. بنابراین، ریخت شناسی اتولیت ها نقش مهمی در شناسایی گونه های نزدیک دارد.
http://www.aejournal.ir/article_113144_60bf92dda730179c9b0e7c36bc872262.pdf
2020-09-22
155
166
10.22034/aej.2020.113144
اتولیت
کپورماهیان
اردک ماهیان
سوف ماهیان
شگ ماهیان
کفال ماهیان
آزادماهیان
فریدون کنار
شادی
وکیلی
maryeidi@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین- پیشوا، ایران
AUTHOR
مریم
عیدی
maryameidi@gmail.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین- پیشوا، ایران
LEAD_AUTHOR
آریا
اشجع اردلان
a_ashjaardalan@yahoo.com
3
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریا، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
احدی زاده، س.،1392. بررسی ویژگی های سن و رشد کیلکای معمولی در حوضه جنوبی دریای خزر. پایان نامه برای دریافت درجه کارشناسی ارشد. دانشکده علوم و فنون دریایی.
1
اسماعیلی، ح.ر.؛ تیموری، آ. و پیروار ز.، 1387. ریخت شناسی سنگریزه شنوایی (اتولیت) در تعدادی از ماهیان آب شیرین ایران. مجله علمی شیلات ایران. دوره 17، شماره 4، صفحات 163 تا 168.
2
اسماعیلی، ح.ر.؛ غلامی، ز.؛ حجت انصاری، ط. و باغبانی، س.، 1388. ریخت شناسی سنگریزه شنوایی (اتولیت) در برخی از گونه های ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر. مجله زیست شناسی کاربردی. دوره 22، شماره 2، صفحات 18 تا 27.
3
باغبانی، س.، 1388. ریختشناسی استخوان یوروهیال، اتولیت و فلس و اهمیت آن ها در رده بندی شماری از ماهیان آب های داخلی ایران. پایان نامه کارشناسی ارشد علوم جانوری، دانشکده علوم، دانشگاه شیراز.
4
بامشاد، م.؛ عسگری حصنی، م.؛ تیموری، ا. و مجدزاده، س.م.، 1395. ریخت شناسی سنگریزه شنوایی ساژیتا در ماهی کفال طلایی در زیستگاه های ساحلی حوضه جنوبی دریای خزر. فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان. سال 4، شماره 1، صفحات 33 تا 48.
5
پرافکنده حقیقی،ف.، 1387. تعیین سن در آبزیان. انتشارات موسسه تحقیقات شیلات ایران. تهران. 13 صفحه.
6
حسینی، م.؛ پورقاسم، ز. و معافی مدنی، ز.، 1393. معرفی تالاب فریدونکنار بهعنوان تالاب بین المللی و منطقه مهم زیستگاه درنای سیبری. کنگره ملی زیست شناسی و علوم زیستی ایران. مرکز راهکارهای دستیابی به توسعه پایار، انجمن حمایت از طبیعت ایران، تهران.
7
ستاری، م.، 1381. ماهی شناسی، تشریح و فیزیولوژی، انتشارات نقش مهر. 20 صفحه.
8
صدیق زاده، ز.؛ وثوقی، غ.؛ ولی نسب، ت. و فاطمی، م.ر.، 1386. مروری بر ریخت شناسی اتولیت در برخی از ماهیان اقتصادی سطح زی خلیج فارس. مجله پژوهش های بالینی دام های بزرگ (دامپزشکی). دوره 1، شماره 3، صفحات 1 تا 10.
9
واثقی نیک، ر.، 1394. تشخیص افتراقی برخی از ماهیان تجاری آب های انزلی با استفاده از اتولیت. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد ورامین - پیشوا.
10
همایونی،ه.؛ولی نسب،ت. و سیف آبادی،ج.،1390. مقایسه خصوصیات ریخت سنجی اتولیت های ساجیتا در 10 گونه از شگ ماهیان خلیج فارس و دریای عمان. مجله علمی شیلات ایران. دوره 20، شماره 2، صفحات 141 تا 152.
11
یاسمی، م.؛ آناهید، ت.؛ نظری بچگان، ع.ل. و زاهدی، م.ر.، 1393. بررسی و مقایسه خصوصیات مورفولوژی و مورفومتری اتولیت دو گونه از کفال ماهیان؛ کفال طلایی دریای خزر و گاریز خلیج فارس. مجله محیط زیست جانوری. دوره 6، شماره 2، صفحات 9 تا 16.
12
Bermejo, S., 2007. Fish age classification based on length, weight, sex and otolith morphological features. Fisheries Research Vol. 84, pp: 270-274.
13
Campana, S.E. and Neilson, J. D., 1985. Micro structure of fish otoliths. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Science Vol. 42, pp: 1014-1032.
14
Campana, S.E., 2004. Photographic atlas of fish otoliths of the Northwest Atlantic Ocean. Ottawa: NRC Research Press. pp: 1-284.
15
Harvey, T. J.; Loughlin R. T.; Perez A. M. and Oxman S. D., 2000. Relationship between fish size and otolith length for 63 species of fishes from the Eastern North Pacific Ocean. NOAA Technical Report NMFS 150, pp: 1-36.
16
Hunt, J. J., 1992. Morphological characteristics of otoliths for selected fish in the Northwest Atlantic. Journal of Northwest Atlantic Fisheries Sciences Vol. 13, pp: 63-75.
17
Jawad, L. A., 2007. Comparative morphology of the otolith of the triplefins (family: Tripterygiidae). Journal of Natural History Vol. 41, No. 13-16, pp: 901-924.
18
Jawad, L. A., Al-Jufaili, S. A. and Al-Shuhaily, S.S., 2008. Morphology of the otolith of the greater Lizardfish Saurdia tumbil (pisces: synodontidae). Journal of Natural History Vol. 42, No. 35-36, pp: 2321-233.
19
Kinacigil, H. T.; Akyol, O.; Metun, G. and Saygl, H., 2000. A systematic study on the otolith characters of Sparidae (Pisces) in the Bay of Izmir (Aegean Sea). Turkish Journal Zoology Vol. 24, pp: 357-364.
20
Sawhney, A.K. and Johal, M.S., 1999. Potential application of elemental analysis of fish otoliths as pollution indicator. Bulletin of environmental contamination and toxicology Vol. 63, No. 6, pp: 698-702.
21
Strelcheck, A.J.; Fitzhugh, G.R.; Coleman, F.C. and Koenig, C.C., 2003. Otolith–fish size relationship in juvenile gag (Mycteroperca microlepis) of the eastern Gulf of Mexico: a comparison of growth rates between laboratory and field populations. Fisheries Research Vol. 60, No. 2-3, pp: 255-265.
22
Yoshinaga, J.; Morita, M. and Edmonds, J. S., 1999. Determination of copper, zinc, cadmium and lead in a fish otolith certified reference material by isotope dilution inductively coupled plasma mass spectrometry using off-line solvent extraction. Journal of Analytical Atomic Spectrometry Vol. 14, No. 10, pp: 1545-1659.
23
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی میزان روی و کادمیوم در ماهی آترینا (Atherina boyeri) صید شده از تالاب بینالمللی انزلی
اگرچه فلزات سنگین به طور طبیعی به محیط های آبی وارد می شوند، اما سطح آن ها به وسیله فعالیت های انسانی افزایش می یابد. این آلاینده ها در موجودات آبزی تجمع می یابند و میزان آن ها طی زنجیره غذایی افزایش می یابد. وجود این آلاینده های فلزی در ماهی ها به علت مصرف غذایی آن ها برای انسان از اهمیت ویژه ای برخوردار است. از این رو در این مطالعه تعداد 30 قطعه ماهی آترینا از تالاب بین المللی انزلی در تابستان سال 1392 صید و میزان فلزات روی و کادمیوم در بافت عضله آن ها با استفاده از دستگاه جذب اتمی تعیین شد. نتایج نشان داد که بین میانگین غلظت (میکروگرم برگرم وزنتر) فلزات کادمیوم (0/035±0/088) و روی (1/24±9/27) در بافت عضله ماهی آترینا اختلاف معنی داری وجود داشت (0/05>p ). میزان THQ برای هریک از فلزات و نیز TTHQ کم تر از یک به دست آمد که نشان از عدم وجود خطر برایمصرف کنندگان آن دارد. مقایسه میزان های به دست آمده روی و کادمیوم با استانداردهای بین المللی حاکی از آن بود که به طور کلی میزان این فلزات پایین تر از استانداردهای ارائه شده می باشد. میزان جذب روزانه و هفتگی روی و کادمیوم در اثر مصرف ماهی آترینا پایین تر از میزان توصیه شده توسط JECFA بود. افراد بالغ از نظر روی و کادمیوم به ترتیب 2/27 و 0/8 و افراد نابالغ به ترتیب 0/47 و 0/16 کیلوگرم در روز می توانند، بدون آن که برای سلامتی آن ها عوارض غیر سرطان زایی داشته باشد از ماهی آترینا استفاده کنند. به طورکلی به نظر می رسد میزان فلزات روی و کادمیوم در ماهی آتزینا در محدوده امن قرار دارد و نیز برای مصرف کنندگان آن خطری را ایجاد نمی کند.
http://www.aejournal.ir/article_113903_ff9f28f2f8f11ccdc566ef3e409e9569.pdf
2020-09-22
167
174
10.22034/aej.2020.113903
ماهی آترینا
کادمیوم
روی
تالاب انزلی
فلزات سنگین
محمدحسین
سینکاکریمی
mh_sinkakarimi@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
AUTHOR
محمدحسین
گرجیان عربی
h.gorjian@umz.ac.ir
2
مرکز پژوهشی حوضه اقلیمی خزر، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران
LEAD_AUTHOR
محسن
احمدپور
mo.ahmadpour@umz.ac.ir
3
مرکز پژوهشی حوضه اقلیمی خزر، دانشگاه مازندران، بابلسر، ایران
AUTHOR
مهدی
حسن پور
mehdi.hassanpour@yahoo.com
4
اداره کل حفاظت محیط زیست استان گلستان، گرگان، ایران
AUTHOR
ابراهیمی سیریزی، ز.؛ ساکی زاده، م.؛ اسماعیلی ساری، ع.؛ بهرامی فر، ن.؛ قاسمپوری، س.م. و کیوان، ع.، 1391. بررسی فلزات سنگین کادمیوم، سرب، مس و روی در بافت عضله اردک ماهی تالاب بین المللی انزلی، انباشتگی و ارزیابی خطرات. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. دوره 22، شماره 87، صفحات 57 تا 63.
1
امیدپور، آ.؛ عسکری ساری، ا. و جوادزاده پورشالکوهی، ن.، 1396. تجمع فلزات نیکل و وانادیوم در عضله هشت گونه ماهی منطقه بحرکان بندر هندیجان (خلیج فارس). مجله علمی شیلات ایران. سال 26، شماره 4، صفحات 161 تا 172.
2
احمدی، م. ا.؛ خانی پور، ع.ا. و ابوالقاسمی، س.ج.، 1394. اندازه گیری و مقایسه غلظت فلزات سنگین کادمیوم، نیکل و روی در بافت خوراکی عضله اردک ماهی (Esox Lucius) تالاب انزلی. مجله علمی شیلات ایران. سال 24، شماره 1، صفحات 75 تا 82.
3
پناهنده، م. و مروتی، م.، 1397. ﺑﺮرﺳﻲ ﺧﻄﺮ ﻓﻠﺰات سنگین بر حیات اکوسیستم ﺗﺎﻻب اﻧﺰﻟﻲ. ﻣﺠﻠﻪ ﻋﻠﻤﻲ پژوهشی زﻳﺴﺖ ﺷﻨﺎﺳﻲ ﻛﺎرﺑﺮدی. دوره 31، شماره 3، صفحات 23 تا 39.
4
جعفرزاده حقیقی، ن. و فرهنگ، م.، 1385. آلودگی دریا (ترجمه). انتشارات آوای قلم. 393 صفحه.
5
جمالزاد، ف.، ١٣٧٧. تعیین میزان حساسیت مناطق مختلف تالاب انزلی با استفاده از سامانة اطلاعات جغرافیایی(GIS). پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده محیط زیست، دانشگاه تهران. ۵۲ صفحه.
6
خانی پور، ع.ا.؛ احمدی، م.؛ سیف زاده، م.؛ زارع گشتی، ق. و زلفی نژاد، ک.م.، 1395. بررسی میزان تجمع فلزات سنگین کادمیوم، سرب و روی در بافت خوراکی عضله ماهی کاراس (Carassiu sauratus) تالاب بین المللی بندرانزلی. فصلنامه علوم و صنایع غذایی. دوره 13، شماره 54، صفحات 155 تا 163.
7
دهقانی، ر.، 1389. سم شناسی محیط. انتشارات تک درخت. 218 صفحه.
8
سینکاکریمی، م.ح.؛ منصوری، ب.؛ دنیوی، ر. و آزادی، ن.ع.، 1396. تعیین خطرات و حد مجاز مصرف ماهی های سفید، کفال و کپور از نظر فلز سرب در سواحل جنوبی دریای خزر: مطالعه مروری سیستماتیک و متاآنالیز. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. دوره 27، شماره 147، صفحات 415 تا 432.
9
شریف فاضلی، م.؛ ابطحی، ب. و صباغ کاشانی، آ.، 1384. سنجش تجمع فلزات سنگین سرب، نیکل و روی در بافت های ماهی کفال (Liza aurata) سواحل جنوبی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. سال 14، شماره 1، صفحات 65 تا 78.
10
عبدلی ا. و نادری، م.، 1387. تنوع زیستی ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر. انتشارات علمی آبزیان. 242 صفحه.
11
ولی پور، ع.ر. و حقیقی، د.، 1378. روند تغییرات صید ماهیان در تالاب انزلی در سال های 1371-1375. مجله علمی شیلات ایران. سال 8، شماره 4، صفحات 73 تا 87.
12
نوروزی، م.، 1396. بررسی برخی فلزات سمی و ضروری در عضله، کبد و آبشش ماهی سوف حاجی طرخان (Perca fluviatilis) در تالاب انزلی. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. سال 9، شماره 31، صفحات 57 تا 68.
13
یعقوب زاده، ی.؛ حسین نژاد، م.؛ اسدی، ش.گ. و پورعلی، م.، 1392. بررسی غلظت سرب در ماهی سفید (Rutilus frisii kutum) سواحل دریای خزر (مطالعه موردی: بندر انزلی و رودسر). مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. دوره 23، شماره 110، صفحات 102 تا 108.
14
Adel, M.; Dadar, M.; Fakhri, Y.; Oliveri Conti, G. and Ferrante, M., 2016. Heavy metal concentration in muscle of pike (Esox lucius Linnaeus, 1758) from Anzali international wetland, southwest of the Caspian Sea and their consumption risk assessment. Toxin reviews. Vol. 35, No. 3-4, pp: 217-223.
15
Alam, M.G.M.; Tanaka, A.; Allinson, G.; Laurenson, L.J.B. and Stagnitti, S., 2002. A comparison of trace element concentrations in cultured and wild carp (Cyprinus carpio) of Lake Kasumigaura, Japan. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 53, No. 3, pp: 348–354.
16
Amini Ranjbar, G. and Sotoudehnia, F., 2005. Investigation of heavy metals accumulation in muscle tissue of Mugil auratus in relation to standard length, weight, age and sex. Iranian Scientific Fisheries Journal. Vol. 14, No. 3, pp: 1-18.
17
Assubaie, F.N., 2015. Assessment of the levels of some heavy metals in water in Alahsa Oasis farms, Saudi Arabia, with analysis by atomic absorption spectrophotometry. Arabian Journal of Chemistry. Vol. 8, No. 2, pp: 240-245.
18
ATSDR. 2017. Agency for Toxic Substances and Disease Registry. Avialable at: https://www.atsdr.cdc.gov/spl/.
19
Cooper, C.B.; Doyle, M.E. and Kipp, K., 1991. Risk of consumption of contaminated seafood, the Quincy Bay Case Study. Environmental Health Perspectives. Vol. 90, pp: 133-140.
20
Darmono, D. and Denton, G.R.W., 1990. Heavy metal concentrations in the banana prawn, Penaeus merguiensis, and leader prawn, P. monodon, in the Townsville Region of Australia. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 44, No. 3, pp: 479-486.
21
FAO. 1983. Compilation of legal limits for hazardous substances in fish and fishery products. No. 464, pp: 5-100.
22
Harmanescu, M.; Alda, L.M.; Bordean, D.M.; Gogoasa, I. and Gergen, I., 2011. Heavy metals health risk assessment for population via consumption of vegetables grown in old mining area; a case study: Banat County, Romania. Chemistry Central Journal. Vol. 5, No. 64, pp: 1-10.
23
Heath, A.G., 1987. Water pollution and fish physiology. 2nd Ed. CRC. Press. Boston, USA. 245 p.
24
JECFA. 2013. Joint FAO/WHO Expert Committee on Food Additives.
25
Loutfy, N.; Fuerhacker, M.; Tundo, P.; Raccanelli, S.; El Dien, A.G. and Ahmed, M.T., 2006. Dietary intake of dioxins and dioxin-like PCBs, due to the consumption of dairy products, fish/seafood and meat from Ismailia city, Egypt. Science of the Total Environment. Vol. 15, No. 1, pp: 1-8.
26
Maher, W.A., 1986. Trace metal concentrations in marine organisms from St. Vincent Gulf, South Australia. Water Air Soil Pollut. Vol. 29, No. 1, pp: 77-84.
27
Mansouri, N.; Khorasani, N.; Monavari, S.M.; Karbasi, A. and Panahandeh, M., 2013. Non-carcinogenic risk estimation of Cr, Cd, Pb in human to fish consumption from Anzali wetland. World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 5, No. 6, pp: 603-610.
28
Moore, J.W. and Ramamoorthy, S., 1984. Heavy metals in natural waters. Berlin Heidelberg New York: Springer Science and Business Media. 269 p.
29
Ministry of Health and Medical Education of Iran (MHMEI). [Online]. Average lifetime of Iranian; 2015. Available from http://www.behdasht.gov.ir.
30
Nussey, G.; Vuren, J.V. and Preez, H., 2000. Bioaccumulation of chromium, manganese, nickel and lead in the tissues of the moggel, Labeo umbratus (Cyprinidae), from Witbank Dam, Mpumalanga. Water SA. Vol. 26, No. 2, pp: 269-284.
31
Radojevi, M. and Bashkin, V.N., 1999. Practical Environmental Analysis, the Royal Society of Chemistry. UK. 466 p.
32
Rajai, G.; Jahantigh, H.; Mir, A.; Motlagh, S.H. and Hasanpoor, M., 2012. Assessment of Heavy Metals Concentration in Water Well of Sistan and Baluchestan in 1385. Majaleh daneshgahe Olum Pezeshki Mazandaran. Vol. 22, No. 90, pp: 105-12.
33
Rezaei, M., 2011. Bioaccumulation of heavy metals in freshwater fish species, Anzali, Iran. Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 87, No. 4, pp: 386- 392.
34
Roesijadi, G. and Robinson, W.E., 1994. Metal regulation in aquatic animals. Mechanism of uptake, accumultation, and release. London: Lewis publishers.
35
Scoullos, M.; Vonkeman, G.H.; Thornton, I. and Makuch, Z., 2012. Mercury-Cadmium-Lead Handbook for Sustainable Heavy Metals Policy and Regulation. Springer Science & Business Media.
36
Siegel, A.H. and Sigel, R.K., 2013. Cadmium: from toxicity to essentiality. Dordrecht: Springer.
37
Sugumaran, R.; Harken, J. and Gerjevic, J., 2004. Using Remote Sensing Data to Study Wetland Dynamics in Iowa. Iowa Space Grant (Seed) Final Technical Report. Iowa Space Grant. Cedar Falls, Iowa, USA.
38
Tobin, J.M. and Roux, J.C., 1998. Mucor biosorbent for chromium removal. Water Research. Vol. 32, No. 5, pp: 1407-1416.
39
USEPA. 1989. Guidance manual for assessing human health risks from chemically contaminated, fish and shellfish. United State Environmental Protection Agency. EPA-503/8-89-002, US EPA Office of Marine and Estuarine Protection, Washington, DC.
40
U.S. Guidance for assessing chemical contaminant data for use advisories. 2000. volume 2: Risk assessment and fish consumption limites. 3th ed. Washington, D.C: U.S. Enviromental Protection Agency. Available from: http://www.epa.gov/waterscience/fish/guidance.html.
41
World Health Organization. 1996. Indicators for Assessing Vitamin a Deficiency and their Application inMonitoring and Evaluating Intervention Programs. Geneva: World Health Organization.
42
Yazdi, R.B.; Ebrahimpour, M.; Mansouri, B.; Rezaei, M.R. and Babaei, H., 2012. Contamination of metals in tissues of Ctenopharyngodon idella and Perca fluviatilis, from Anzali Wetland, Iran. Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 89, No. 4, pp: 831-835.
43
ORIGINAL_ARTICLE
جغرافیای زیستی و پراکنش ماهیان غضروفی براساس شاخصهای تنوع گونهای در خلیج فارس و دریای عمان
مطالعه حاضر با هدف بررسی تنوع گونه ای و پراکنش ماهیان غضروفی در خلیج فارس و در دریای عمان با استفاده از شاخص های تنوع زیستی انجام شد و نقشه های مربوطه با استفاده از نرم افزار GIS ترسیم گردید. نمونه برداری از مهر ماه لغایت دی ماه 1396 از آب های استان های سیستان و بلوچستان و هرمزگان در خلیج فارس و دریای عمان به وسیله کشتی ترال کف کلاس فردوس انجام شد. در مجموع تعداد 4014 نمونه از ماهیان غضروفی در منطقه مورد مطالعه صید شدند که 245 نمونه کوسه ماهی متعلق به 10 گونه و 4 خانواده و تعداد 3769 نمونه سپرماهی متعلق به 21 گونه و 12 خانواده را تشکیل می دادند. نتایج نشان داد که شاخص غنای گونهای مارگالف از صفر تا 1/821 برای کوسه ماهیان و از صفر تا 2/65 برای سپر ماهیان متغیر بود. هم چنین شاخص یکپارچگی پیلو 0/43 تا 1 برای کوسه ماهیان و از از 0/11 تا 1 برای سپرماهیان متغیر بود. هم چنین مقدار شاخص شانون برای کوسه ماهیان از صفر تا 1/09 و برای سپرماهیان از صفر تا 1/86 متغیر بود. پراکنش شاخص تنوع شانون برای کوسه ماهیان تنها محدوده طول جغرافیایی 54 تا 56 درجه (محدوده جنوب جزیره قشم تا بندرلنگه) را نقطه با تنوع گونهای بالا نسبت به بقیه منطقه مورد مطالعه نشان داد. در طرف دیگر، پراکنش این شاخص برای سپرماهیان دو محدوده طول جغرافیایی 57 تا 59 درجه (سیریک تا میدانی) و طول جغرافیایی 53 تا 55 درجه (جزیره کیش تا جزیره قشم) را نقاط داغ جهت حضور سپرماهیان معرفی کرد.
http://www.aejournal.ir/article_113939_d8e4a3c2d4f01da86132368d5d492e0a.pdf
2020-09-22
175
182
10.22034/aej.2020.113939
کوسه ماهیان
سپرماهیان
تنوع گونهای
پراکنش
خلیج فارس
دریای عمان
علی رضا
راستگو
rastgoo.alireza@yahoo.com
1
باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
سیامک
بهزادی
s_behzady@yahoo.com
2
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
تورج
ولی نسب
t_valinassab@yahoo.com
3
مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
بهزادی، س.، 1385. بررسی تنوع و پراکنش سپرماهیان در آب های استان هرمزگان (خلیج فارس و دریای عمان). پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس. 112 صفحه.
1
راستگو، ع.ر.، 1395. بررسی رژیم غذایی و تخمین سطح تغذیه ای گونه های غالب سپر ماهیان در دریای عمان. رساله دکتری تخصصی دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران. 136 صفحه.
2
راستگو، ع.ر.، 1397. بررسی فراوانی و پراکنش گونههای غالب سپرماهیان در دریای عمان و تعیین اثر فاکتورهای اکولوژیک. پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان. 97 صفحه.
3
راستگو، ع.ر.، 1396. تنوع گونه ای و رابطه طولی وزنی در ماهیان غضروفی خلیج فارس (محدوده استان هرمزگان) و دریای عمان. مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. سال 12، شماره 4، صفحات 1 تا 11.
4
وثوقی، ع.، 1372. شناسایی سپرماهیان تنگه هرمز. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال. 112 صفحه.
5
وثوقی، ع.، 1379. شناسایی و تعیین گسترش ماهیان غضروفی خلیج فارس (آب های استان بوشهر). پایان نامه دکتری دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران. 210 صفحه.
6
Bishop, J.M.; Moore, A.B.M.; Alsaffar, A.H. and Abdul Ghaffar, A.R., 2016. The distribution, diversity and abundance of elasmobranch fishes in a modified subtropical estuarine system in Kuwait. Journal of applied ichthyology. Vol. 32, pp: 75-82.
7
Bustamante, C.; VargasCaro, C. and Bennett, M.B., 2014. Biogeographic patterns in the cartilaginous fauna (Pisces: Elasmobranchii and Holocephali) in the southeast Pacific Ocean. Peer J. Vol. 2, pp: e416.
8
Campbell, H.A.; Hewitt, M.; Watts, M.E.; Peverell, S. and Franklin, C.E., 2012. Short-and long-term movement patterns in the freshwater whipray (Himantura dalyensis) determined by the signal processing of passive acoustic telemetry data. Marine and Freshwater Research. Vol. 63, pp: 341-350.
9
Carey, F.G. and Scharold, J.V., 1990. Movements of blue sharks (Prionace glauca) in depth and course. Marine Biology. Vol. 106, pp: 329-342.
10
Collins, A.; Heupel, M. and Motta, P., 2007. Residence and movement patterns of cownose rays Rhinoptera bonasus within a south‐west Florida estuary. Journal of Fish Biology. Vol. 71, pp: 1159-1178.
11
Craig, J.; Gillikin, P.; Magelnicki, M. and May, L., 2010. Habitat use of cownose rays (Rhinoptera bonasus) in a highly productive, hypoxic continental shelf ecosystem. Fisheries Oceanography. Vol. 19, pp: 301-317.
12
Ellis, J.R.; Cruz-Martinez, A.; Rackham, B. and Rogers, S.I., 2005. The distribution of chondrichthyan fishes around the British Isles and implications for conservation. Journal of Northwest Atlantic Fishery Science. Vol. 35, pp: 195-213.
13
Ferretti, F.;Myers, R.A.;Serena, F. and Lotze, H.K., 2008. Loss of large predatory sharks from the Mediterranean Sea. Conservation Biology. Vol. 22, pp: 952-964.
14
Ferretti, F.; Worm, B.; Britten, G.L.; Heithaus, M.R. and Lotze, H.K., 2010. Patterns and ecosystem consequences of shark declines in the ocean. Ecology Letters. Vol. 13, pp: 1055-1071.
15
Ghotbeddin, N.; Javadzadeh, N. and Azhir, M.T., 2014. Catch per unit area of Batoid fishes in the Northern Oman Sea. Iranian J of fisheries sciences. Vol. 13, No. 1, pp: 47-57.
16
Henderson, A.C.; McIlwain, J.L.; Al-Oufi, H.S. and Al Sheili, S., 2007. The Sultanate of Oman shark fishery: Species composition, seasonality and diversity. Vol. 86, pp: 159-168.
17
Henderson, A.C.; McIlwain, J.L.; Al-Oufi, H.S.; Al Sheile, S. and Al-Abri, N., 2009. Size distributions and sex ratios of sharks caught by Oman’s artisanal fishery. African Journal of Marine Science. Vol. 31, pp: 233-239.
18
Heupel, M. and Hueter, R., 2002. Importance of prey density in relation to the movement patterns of juvenile blacktip sharks (Carcharhinus limbatus) within a coastal nursery area. Marine and Freshwater Research. Vol. 53, pp: 543-550.
19
Jabado, R.W. and Spaet, J.L., 2017. Elasmobranch fisheries in the Arabian Seas Region: Characteristics, trade and management. Fish and Fisheries. Vol. 18, pp: 1096-1118.
20
Jabado, R.W.; Kyne, P.M.; Pollom, R.A.; Ebert, D.A.; Simpfendorfer, C.A.; Ralph, G.M. and Dulvy, N.K., 2017. The Conservation Status of Sharks, Rays, and Chimaeras in the Arabian Sea and Adjacent Waters. Environment Agency Abu Dhabi, UAE and IUCN Species Survival Commission Shark Specialist Group, Vancouver, Canada.
21
Jaine, F.R.; Couturier, L.I.; Weeks, S.J.; Townsend, K.A.;Bennett, M.B.;Fiora, K. and Richardson, A.J., 2012. When giants turn up: sighting trends, environmental influences and habitat use of the manta ray Manta alfredi at a coral reef. PLoS One. Vol. 7, pp: e46170.
22
Kendall, V.J. and Haedrich, R.L., 2006. Species richness in Atlantic deep-sea fishes assessed in terms of the mid-domain effect and Rapoport's rule. Deep Sea Research Part I: Oceanographic Research Papers. Vol. 53, pp: 506-515.
23
Margalef, R., 1969. Prespectives in Ecological Theory. The University of Chicago Press, Chicago.
24
Marques, J.C., 2009. Ecological indicators for coastal and estuarine environmental assessment: a user guide. WIT Press, USA.
25
Moore, A.B.M. and Peirce, R., 2013. Composition of elasmobranch landings in Bahrain. African Journal of Marine Science. Vol. 35, pp: 593-596.
26
Moore, A.B.M.; McCarthy, I.D.; Carvalho, G.R. and Peirce, R., 2012. Species, sex, size and male maturity composition of previously unreported elasmobranch landings in Kuwait, Qatar and Abu Dhabi Emirate. Journal of Fish Biology. Vol. 80, pp: 1619-1642.
27
Navarro, J.; Cardador, L.; Fernández, Á.M.; Bellido, J.M. and Coll, M., 2016. Differences in the relative roles of environment, prey availability and human activity in the spatial distribution of two marine mesopredators living in highly exploited ecosystems. Journal of biogeography. Vol. 43, pp: 440-450.
28
Pielou, E.C., 1969. An introduction to Mathematical Ecology. Wiley Interscience, New York.
29
Pinto, R.; Patrício, J.; Baeta, A.; Fath, B.D.; Neto, J.M. and Marques, J.C.,2009. Review and evaluation of estuarine biotic indices to assess benthic condition. Ecological indicators. Vol. 9, No. 1, pp: 1-25.
30
Rastgoo, A.R. and Navarro, J., 2017. Trophic levels of teleost and elasmobranch species in the Persian Gulf and Oman Sea. J of Applied Ichthyology. Vol. 33, pp: 403-408.
31
Rastgoo, A.R.; Navarro, J. and Valinassab, T., 2018. Comparative diets of sympatric batoid elasmobranchs in the Gulf of Oman. Aquatic Biology. Vol. 27, pp: 35-41.
32
Reynolds, R.M., 1993. Physical oceanography of the Gulf, Strait of Hormuz & the Gulf of Oman: results from the mitchell expedition. Marine pollution bulletin. Vol. 27, pp: 35-60.
33
Salarpouri, A.; Kamrani, E.; Kaymaram, F. and Mahdavi Najafabadi, R., 2018. Essential fish habitats (EFH) of small pelagic fishes in the north of the Persian Gulf and Oman Sea, Iran. Iranian J of Fisheries Sciences. Vol. 17, pp: 74-94.
34
Shepherd, T.D. and Myers, R.A., 2005. Direct and indirect fishery effects on small coastal elasmobranchs in the northern Gulf of Mexico. Ecology letters. Vol. 8, pp: 1095-1104.
35
Torres, L.G.; Heithaus, M.R. and Delius, B., 2006. Influence of teleost abundance on the distribution and abundance of sharks in Florida Bay, USA. Hydrobiologia. Vol. 569, pp: 449-455.
36
Valinassab, T.; Daryanabard, R.; Dehghani, R. and Pierce, G.J., 2006. Abundance of demersal fish resources in the Persian Gulf and Oman Sea. J of the Marine Biological Association of the United Kingdom. Vol. 86, pp: 1455-1462.
37
Webb, P.W.; Cotel, A. and Meadows, L.A., 2010. Waves and eddies: effects on fish behavior and habitat distribution. Fish locomotion: An eco-ethological perspective. pp: 1-39.
38
Wetherbee, B.M. and Cortés, E., 2004. Food consumption and feeding habits. In: Carrier, J.C., Musick, J.A., Heithaus, M.R. (Eds.), The Biology of Sharks and Their Relatives. CRC Press, Boca Raton, FL. pp: 224-246.
39
ORIGINAL_ARTICLE
انباشتگی فلزات جیوه و روی در عضله چهار گونه ماهیان دریای خزر (مطالعه موردی: سواحل محمودآباد-نوشهر)
امروزه افزایش جمعیت، توسعه صنایع مختلف و گسترش مناطق کشاورزی باعث ورود حجم بالای آلاینده های مختلف به ویژه فلزات سنگین به محیط های آبی گردیده است. از این رو در این مطالعه به بررسی میزان جیوه و روی در ماهیان مصرفی Mugil cephalous Linnaeus، Rutilus frisii kutum، Cyprinus carpio و Sander lucioperca از سواحل جنوبی دریای خزر محدوده محمودآباد تا نوشهر در فصل زمستان 1396 پرداخته شد. از هر گونه ماهی تعداد 10 نمونه به صورت تصادفی صید و جهت آنالیز فلزات استفاده شد. به منظور سنجش جیوه از دستگاه مرکوری آنالیزر پیشرفته و برای سنجش روی از دستگاه جذب اتمی شعله استفاده گردید. بیش ترین میزان فلز جیوه در بافت عضله ماهی سوف با 0/68 میکروگرم بر گرم وزن خشک و کم ترین میزان آن با 0/03 میکروگرم بر گرم وزن خشک در ماهی کفال اندازه گیری شد و در مورد فلز روی نیز بیش ترین میزان در ماهی سوف 67/66 میکروگرم بر گرم وزن خشک و کم ترین میزان در ماهی کپور 48/68 میکروگرم بر گرم وزن خشک اندازه گیری شد. هم چنین نتایج نشان داد که فردی با وزن بدنی معادل 70 کیلوگرم، فقط 10 گرم در روز یا 1/3 وعده در ماه می تواند از ماهی سوف استفاده کند. به طورکلی نتایج نشان داد که تجمع فلزات در سوف که گونه ای با رژیم غذایی گوشت خواری است نسبت به گونه های کپور که گونه های بنتوپلاژیک هستند به میزان بیش تری مشاهده شد و براساس میزان جیوه در بافت عضله ماهی سوف، در این گونه محدودیت مصرف مشاهده شد.
http://www.aejournal.ir/article_114234_afb91e61ed699fcc0fa65f8b399236d2.pdf
2020-09-22
183
188
10.22034/aej.2020.114234
جیوه
روی
حد مجاز مصرف غذایی
دریای خزر
معصومه
موفق بهنام
m.behnam2489@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
عباس
اسماعیلی ساری
esmaili@modares.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
LEAD_AUTHOR
سید محمد
ماجدی
smmajedi@gmail.com
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
امینی رنجبر، غ.ر. و ستوده نیا، ف.، 1384. تجمع فلزات سنگین در بافت عضله ماهی کفال طلایی (Mugil auratus) دریای خزر در ارتباط با برخی مشخصات بیومتریک (طول استاندارد، وزن، سن و جنسیت). مجله علمی شیلات ایران. سال 14 ، شماره 3، صفحات 1 تا 18.
1
احمدی، م.؛ خانی پور، ع.ا. و ابوالقاسمی، س.ج.، 1394. اندازه گیری و مقایسه غلظت فلزات سنگین کادمیوم، نیکل و روی در بافت خوراکی عضله اردک ماهی (Esox lucius) تالاب انزلی. مجله علمی شیلات ایران. سال 24، شماره 1، صفحات 75 تا 82.
2
جاودان خرد، ا.؛ اسماعیلی ساری، ع. و بهرامی فر، ن.، 1391. نقش رژیم غذایی و شرایط زیستگاهی در تجمع آلاینده های آلی در ماهیان تالاب بین المللی انزلی. مجله بهره برداری و پرورش آبزیان. جلد 1، شماره 2، صفحات 31 تا 50.
3
خانی پور، ع.ا.؛ احمدی، م.؛ سیف زاده، م.؛ زارع گشتی، ق. و زلفی نژاد، ک.، 1395. بررسی میزان تجمع فلزات سنگین کادمیوم، سرب و روی در بافت خوراکی عضله ماهی کاراس (Carassius auratus) تالاب بین المللی بندر انزلی. فصلنامه علوم و صنایع غذایی. شماره 54، دوره 13، صفحات 155 تا 163.
4
سیف زاده، م.؛ احمدی، م. و زارع گشتی، ق.، 1395. بررسی میزان تجمع کروم، روی و مس در بافت خوراکی ماهی کپور صید شده از تالاب بین المللی انزلی. علوم غذایی و تغذیه، سال 13، شماره 3، صفحات 99 تا 105.
5
عمارلو، ج.؛ اسماعیلی ساری، ع. و قاسمپوری، م.، 1390. محاسبه نرخ مصرف اردک ماهی، کپور معمولی و ماهی سوف در محدوده تالاب انزلی براساس ترکیبات جیوه آلی و معدنی در اندام خوارکی آن. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه تربیت مدرس.
6
عبدلی، ع.ا.، 1378. ماهیان آب های داخلی ایران. انتشارات موزه طبیعت و حیات وحش ایران. چاپ ششم. 378 صفحه.
7
منصوری، ن. و عظیمی، ش.، 1394. فلزات سنگین در محیط زیست. انتشارات حک.
8
Adel, M.; Dadar, M.; Fakhri, Y.; Oliveri Conti, G. and Ferrante, M., 2016. Heavy metal concentration in muscle of pike (Esox lucius) from Anzali international wetland, southwest of the Caspian Sea and their consumption risk assessment. Toxin reviews. Vol. 35, No. 3-4, pp: 217-223.
9
Canli, M. and Atli, G., 2003. The relationships between heavy metal (Cd, Cr, Cu, Fe, Pb, Zn) levels and the size of six Mediterranean fish species. Environ pollut. 121, pp: 129-136.
10
Dhanakumar, S.; Solaraj, G. and Mohanraj, R., 2015. Heavy metal partitioning in sediments and bioaccumulation in commercial fish species of three major reservoirs of river Cauvery delta region, India. Ecotoxicol environ Saf. Vol. 113, pp: 145-151.
11
EPA. 2000. Guidance for assessing chemical contaminant data for use in fish advisories. Volume 2: Risk Assessment and Fish Consumption Limits (U.S. EPA, Washington, DC, ed. 3, 2000).
12
Fatollahi, F., 2003. Reviews the Anzali wetland system functioning in decreasing and eliminating pollutants urban, industrial, AgriculturalIsfahan University. Master Thesis. Environmental Engineering.
13
Heba, H.; Abu Zeid, I.; Osama, A.; Abuzinadah, F.A. and Zaki Al-Hasawi, Z., 2015; Determination of Some Heavy Metals in Tissues and Organs of 3 Commercial Fish Species at Al-Hudaydah, Red Sea Coast of Western Yemen. World J of fish and marine sciences. Vol. 7, No. 3, pp: 198-208.
14
Leung, H., 2016. Monitoring and assessment of heavy metal contamination in a constructed wetland in Shaoguan (Guangdong Province, China): bioaccumulation of Pb, Zn, Cu and Cd in aquatic and terrestrial components. Environmental Science and Pollution Research. pp: 1-10.
15
Malakootian, M.; Yaghmaeian, K.; Meserghani, M.; Mahvi, A.H., and Danesh Pajouh, M., 2011. Determination of Pb, Cd, Cr and Ni concentration in imported Indian rice to Iran. Iranian Journal of health and environment. Vol, 4, No, 1. pp: 77-84.
16
Mirlean, N.; Larned, S.; Nikora, V. and Kütter, V., 2005. Mercury in lakes and lake fishes on a conservation-industry gradient in Brazil. Chemosphere. Vol. 60, No. 2, pp: 226-236.
17
Mollazadeh, N.; Esmaili, A. and Ghasempouri, M., 2011. Distribution of mercury in some organs of Anzali Wetland Common Cormorant. In 2nd International Conference on Environmental Engineering and Applications, IPCBEE (Vol. 17, No. IACSIT Press, Singapore).
18
Manavi, P.N. and Mazumder, A., 2018. Potential risk of mercury to human health in three species of fish from the southern Caspian Sea. Marine pollution bulletin. Vol. 130, pp: 1-5.
19
Stancheva, M. and Makedonski, P.E., 2013. Determination of heavy metals (Pb, Cd, as and hg) in black sea grey mullet (Mugil cephalus). Bulgarian Journal of Agricultural Science. Vol. 19, pp: 30-34.
20
Sharma, R.C. and Rawat, J.S., 2009. Monitoring of aquatic macroinvertebrates as bioindicator for assessing the health of wetlands: A case study in the Central Himalayas, India. Ecol Indic. Vol, 9. pp: 118-128.
21
Tabatabaie, T.; Ghomi, M.R.; Amiri, F. and Zamani ahmadmahmoodi, R., 2011. Comparative study of mercury accumulation in two fish species (Cyprinus carpio & Sander lucioperca) from Anzali and Gomishan wetlands in the southern coast of the Caspian Sea. Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 87, No. 6, pp: 674-677.
22
Usero, J.; Morillo, J. and Gracia, I., 2005. Heavy metal concentrations from the Atlantic coast of Southern Spain. Chemosphere. No. 59, pp: 1175-1181.
23
Yi, Y.; Yang, Z. and Zhang, S., 2011. Ecological risk assessment of heavy metals in sediment and human health risk assessment of heavy metals in fishes in the middle and lower reaches of the Yangtze River basin. Environmental Pollution. Vol. 159, No. 10, pp: 2575-2585.
24
Yilmaz, F., 2009; The comparison of heavy metal concentrations (Cd, Cu, Mn, Pb, and Zn) in tissues of three economically important fish (Anguilla anguilla, Mugil cephalus and Oreochromis niloticus) Inhabiting Köycegiz Lake-Mugla (Turkey). Turkish Journal of Science and Technology. Vol. 4, No. 1, pp: 7-15.
25
Yap, C.K.; Hatta, Y.; Edward, F.B. and Tan, S.G., 2008. Distribution of heavy metal concentrations (Cd, Cu, Ni, Fe and Zn) in the different soft tissues and shells of wild mussels Perna viridis collected from Bagan Tiang and Kuala Kedah. Malays. Appl.Biol. Vol. 37, pp: 1-10.
26
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات سطوح مختلف ماکروجلبک جیره Gracilaria pygmea بر برخی از پارامترهای بیوشیمیایی خون ماهی سی باس آسیایی (Lates calcarifer)
از خصوصیات بارز و مهم ماکروجلبک ها غنی بودن ترکیبات زیست فعال مانند ویتامین ها، مواد معدنی، رنگدانه ها و پلی ساکاریدها است. هدف از مطالعه حاضر بررسی اثرات پودر ماکروجلبک جیره (Gracilaria pygmea) بر برخی از شاخص های بیوشیمیایی خون ماهی باس دریایی آسیایی (Lates calcarifer) بود. در شروع آزمایش تعداد 240 قطعه بچه ماهی به صورت کاملاً تصادفی بین 12 مخزن فایبرگلاس 300 لیتری تقسیم شدند. تیمارهای آزمایشی با سه تکرار شامل 0 %، 1/5%، 2% و 2/5% ماکروجلبک به صورت افزودنی در جیره طراحی شدند. در پایان آزمایش نمونه های خون جهت سنجش پارامترهای بیوشیمیایی خون از ساقه دمی گرفته شد. بیش ترین مقدار جلبک افزودنی به غذای باس دریایی آسیایی جهت کاهش کلسترول و تری گلیسرید خون را غلظت 2 درصد داشت. بیش ترین میزان گلبولین سرم خونی در تیمار 2/5 درصد بود که با گروه شاهد نیز اختلاف معنی داری داشته است. درنتیجه گیری کلی می توان از افزودن 2/5 جلبک گراسیلاریا در غذای ماهی سی باس آسیایی استفاده کرد بدون آن که تاثیر منفی روی پارامترهای بیوشیمیایی و خونی داشته باشد.
http://www.aejournal.ir/article_114344_e0812be3cb1d207595de857cf383f7b7.pdf
2020-09-22
189
196
10.22034/aej.2020.114344
شاخص های بیوشیمیایی
ماکروجلبک دریایی
باس دریایی آسیایی
Gracilaria pygmea
محسن
حیدری
heydari_mohsen84@yahoo.com
1
گروه بهداشت و بیماری های آبزیان، دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
اشکان
زرگر
azargar@gmail.com
2
گروه بهداشت و بیماری های آبزیان، دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
مهدی
سلطانی
3
گروه بهداشت و بیماری های آبزیان، دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
حسین علی
ابراهیم زاده موسوی
mmosavii@ut.ac.ir
4
گروه بهداشت و بیماری های آبزیان، دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
وحید
مرشدی
v.morshedi@gmail.com
5
پژوهشکده خلیج فارس، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ایران
AUTHOR
انصاری فرد، ف.؛ رجبی اسلامی، ه.؛ شمسایی مهرجان، م. و سلطانی، م.، 1396. تاثیر مکمل غذایی اسپیرولینا بر سیستم ایمنی و فاکتورهای بیوشیمیایی خون ماهی کوی (Cyprinus carpio carpio). مجله علمی شیلات ابران. سال 26، شماره 3، صفحات 23 تا 33.
1
بنایی، م.؛ میرواقفی، ع.؛ رفیعی، غ.ر. و آنتونی، س.، 1389. تاثیر تجویز خوراکی سیلی مارین بر روی فاکتورهای بیوشیمیایی خون قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 63، شماره 4، صفحات 271 تا 286.
2
تنگستانی، ن.؛ مرشدی، و.؛ نفیسی بهابادی، م.؛ عضدی، م.؛ فرهودی، آ. و ستوده، ا.، 1396. بررسی اثر مکمل غذایی جلبک گراسیلاریا بر روی فاکتورهای خونی ماهی سی باس آسیایی ( Lates calcarifer). شماره پیاپی 37، جلد 10، شماره 2، صفحات 37 تا 51.
3
حسن نیا، م.ر.؛ قرنجیک،ب.م. و دادقانی،ع.ا.، 1384. بررسی اثر جلبک های دریایی بر میزان کلسترول تخم مرغ. دوره 2، شماره 4، صفحات 11 تا 33.
4
سلیقه زاده، ر.؛ یاوری، و.؛ موسوی، س.م. و ذاکری، م.، 1393. اثر مکمل غذایی جلبک اسپیرولینا بر برخی از فاکتورهای خونی، ایمنی و بیوشیمیایی سرم ماهی بنی Mesopotamichthys sharpeyi. مجله دامپزشکی ایران، دوره 17، شماره 2، صفحات 40 تا 46.
5
شریف روحانی، م.، 1374. تشخیص، پیشگیری و درمان بیماری ها و مسمومیت های ماهی. معاونت تکثیر و پروش آبزیان. اداره کل آموزش و ترویج. چاپ اول، 76 صفحه.
6
فرهودی، آ.؛ سوری نژاد، ا.؛ نفیسی بهابادی، م.؛ سجادی، م.م. و سالارزاده، ع.ر.، 1395. تأثیر جایگزینی نسبی آرد ماهی با جلبک قرمز دریایی Gracilaria pygmaea بر عملکرد رشد، شاخصهای خونی و بیوشیمیایی سرم خون ماهی باس دریایی آسیایی Lates calcarifer. مجله علمی شیلات ایران. سال 26، شماره 3، صفحات 77 تا 89.
7
قرنجیک، ب.م.، 1379. شناسایی جلبک های دریایی سواحل استان سیستان و بلوچستان. مجله علمی شیلات ایران. سال 9، شماره 1، صفحات 37 تا 48.
8
قرنجیک، ب.م.؛ واین، م.؛ بنگمی، خ.؛ خواجه، س.؛ کیانمهر،ه. و حسینی،م.ر.، 1390. مطالعه توده زنده جلبک های قرمز دارویی در محدوده بین جزر و مدی ساحل چابهار. مجله علمی شیلات ایران. سال 20، شماره 3، صفحات 103 تا 114.
9
قرنجیک،ب.م. آبکنار، ع.م.، 1379. شناسایی جلبکهای دریایی سواحل استان سیستان و بلوچستان. مجله علمی شیلات ایران. سال 9، شماره1، صفحات 37 تا 48.
10
قرنجیک، ب.م.، 1389. اطلس جلبک های دریایی سواحل خلیج فارس و دریای عمان. انتشارات موسسه تحقیقات شیلات ایران. 170 صفحه.
11
محمدنژاد شموشکی، م.؛ رسولی، ب. و خلیلی، م.،1390. تأثیر جیره های غذایی مختلف بر برخی از فاکتورهای بیوشیمیایی سرم خون ماهی پنگوسی (Pangasius hypophthalmus) . مجله آبزیان و شیلات. دوره 6، شماره 2، صفحات 37 تا 43.
12
نراقی، م.؛ شمسایی مهرجان، م.؛ رجبی اسلامی، ه. و حسینی شکرابی، س.پ.، 1397. اثرات مکمل غذایی پودر ریز جلبک نانو کلروپسیس (Nannochloropsis oculata) بر برخی شاخص های خونی ماهی قزل آلای رنگین کمان انگشت قد. مجله علمی شیلات ابران. سال 27، شماره 6، صفحات 105 تا 114.
13
Abbey, M.; Clifton, P.; Kestin, M.; Belling, B. and Nestel, P., 1990. Effects of fish-oil on lipoproteins, lecithin: cholesterol acyltransferase and lipid transfer proteins activity in humans. Arteriosclerosis. Vol. 85, pp: 85-94.
14
Andrews, S.R.; Sahu, N.P.; Pal, A.K.; Mukherjee S.C. and Kumar, S., 2011. Yeast and Spirulina in diets for (Labeo rohita) fingerlings affect haemato immunological responses and survival following (Aeromonas hydrophila) challenge. Research in veterinary science. Vol. 91, pp: 103-109.
15
Alwarez-Gonz´alez, C.A.; Civera-Cerecedo, R.; Ortiz Galindo, J.L.; Dumas, S.; Moreno Legorreta, M. and Grayeb-Del Alamo, T., 2001. Effect of dietary protein level on growth and body composition of juvenile spotted sand bass, Paralabrax maculatofasciatus, fed practical diets. Aquacul. Vol. 194, pp: 151-159.
16
AOAC. 2005. Official method of analysis 17th, Washington. DC: Association of Official Analytical Chemists.
17
Bradford, M.M., 1976. A rapid and sensitive method for the Quantification of microgram quantities of protein. Anal Biochem. Vol. 72, pp: 248-258.
18
El-Sheekh, M.M.; Hamad, S.M. and Gomaa, M., 2014. Protective Effects of Spirulina on the liver function and hyperlipidemia of rats and human. Journal of Brazilian archives of biology and technology. Vol. 57, No. 1, pp:77-88.
19
FAO. 2018. The state of the world fisheries and aquaculture meeting the sustainable development goals. Rome. Licence: CC BY-NC-SA 3.0 IGO.
20
Gupta, S. and Abu-Ghannam, N., 2011. Bioactive potential and possible health effects of edible brown seaweeds. Trends in Food Science Technnolgy. Vol. 22, pp: 315-326.
21
Glencross, B., .2006. The nutritional management of barramundi, Lates calcarifer, a review. Aquaculture Nutrition. Vol. 12, pp: 291-309.
22
Holdt, S.L. and Kraan, S., 2011. Bioactive compounds in seaweed: functional food applications and legislation. J Appl Phycol. Vol. 23, pp: 543-597.
23
Kumar, S.; Sahu, N.P.; Pal, A.K.; Choudhury, D.; Yengkokpam, S. and Mukherjee, S.C., 2005. Effect of dietary carbohydrate on heamatology, respiratory burst activity and histological changes in L. rohita Juveniles. Fish Shellfish Immunol. Vol. 19, pp: 331-334.
24
Leonard, S.G.; Sweeney, T.; Pierce, K.M.; Bahar, B.; Lynch, B.P. and O'Doherty, J.V., 2010. The effects of supplementing the diet of the sow with seaweed extracts and fish oil on aspects of gastrointestinal health and performance of the weaned piglet. Livest. Sci. Vol. 134, pp: 135-138.
25
MacArtain, P.; Gill, C.I.R.; Brooks, M.; Campbell, R. and Rowland, I.R., 2007. Nutritional value of edible seaweeds. Nutr Rev. Vol. 65, pp: 535-543.
26
Mhre, H.K.; Malde, M.K.; Eilertsen, K.E. and Elvevoll, E.O., 2014. Characterization of protein, lipid and mineral contents in common Norwegian seaweeds and evaluation of their potential as food and feed. J Sci Food Agric. Vol. 94, pp: 3281-3290.
27
Mustafa, M.G.; Wakamatsu, S.; Takeda, T. and Umino, T., 1995. Effects of algae meal as feed additive on growth, feed efficiency, and body composition in red sea bream. Fish Sci. Vol. 61, pp: 25-28.
28
Nicholson, J.P.; Wolmarans, M.R. and Park, G.R., 2000. The role of albumin in critical illness. Br J Anaesth. Vol. 85, No. 4, pp: 599-610.
29
Nwosu, F.; Morris, J.; Lund, V.A.; Stewart, D.; Ross, H.A.; McDougall, G.J., 2011. Anti proliferative and potential anti diabetic effects of phenolic-rich extracts from edible marine alga. Food Chem. Vol. 126, pp: 1006-1012.
30
Panlasigui, L.N.; Baello, O.Q.; Dimatangal, J.M. and Dumelod, B.D., 2003. Blood cholesterol and lipid-lowering effects of carrageenan on human volunteers. Asia Pacific Journal of Clinical Nutrition. Vol. 12, pp: 209-214.
31
Rahimi Bashar, M.; Tehrani Fard, A.; Ghaseminejad, A.; Alipur, G. and Fallahchai, D., 2008. Determine some blood parameters Whitefish Caspian Sea (Rutilus frissii kutum) at different stages of gonadal development. Journal of Biology Science. Vol. 3, pp: 45-56 (In Persian).
32
Rehulka, J., 2000. Influence of astaxanthin on growth rate, condition, and some blood indices of Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 190, pp: 27-47.
33
Rios, F.S.; Kalinin, A.L. and Rantin, F.T., 2002. The effects of long term food deprivation on respiration and haemato long of the neotropical fish Hoplias malabaricus. Journal of fish Biology. Vol. 61, pp: 85-95.
34
Rohani Ghadikolaei, K.; Abdulalian, E. and Ng, W.K., 2012. Evaluation of the proximate, fatty acid and mineral composition of representative green, brown and red seaweeds from the Persian Gulf of Iran as potential food and feed resources. J Food Sci Technol. Vol. 49, pp: 774-780.
35
Roy, M.C.; Anguenot, R.; Fillion, C.; Beaulieu, M.; Berube, J. and Richard, D., 2011.Effect of a commercially available algal phlorotannins extraction digestive enzymes & carbohydrate absorption in vivo. Food Res. Int. Vol. 44, pp: 3026-3029.
36
Sakai, M., 1999. Current research status of fish immunostimulants. Aquaculture. Vol. 172, pp: 63-92.
37
Salehi, P.; Sonboli, A.; Eftekhar, F.; Nejad Ebrahimi, S. and Yousefzadi, M., 2005. Essential oil composition, antibacterial and antioxidant activity of the oil and various extracts of Ziziphora clinopodioides subs. rigida (BOISS.) RECH. F. from Iran. BioPharm Bul. Vol. 28, pp: 1892-1896.
38
Shahidi yasaghi, S.A.; Mazandarani, M.; Ghorbani Hasan Saraei, A.; Ghorbani, R. and Soleimani, N., 2008. Determination of normal values of some blood serum factors (Electrolyte and non electrolyte) of Acipenser persicus. Fisheries Magazine. Vol. 5, pp: 25-32 (In Persian).
39
Sotoudeh, E. and Mardani, F., 2018. Antioxidant-related parameters, digestive enzyme activity and intestinal morphology in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fry fed graded levels of red seaweed, Gracilaria pygmaea. Aquacult Nutr. Vol. 24, pp: 777-785.
40
Valente, LM.P.; Gouveia, A.; Rema, P.; Matos, J.; Gomes, E.F. and Pinto, I.S., 2006. Evaluation of three seaweeds Gracilaria bursa-pastoris, Ulva rigida and Gracilaria cornea as dietary ingredients in European sea bass (Dicentrarchus labrax) juveniles. Aquaculture. Vol. 252, pp: 85-91.
41
van Ginneken, V.J.T.; Helsper, J.; de Visser, W.; van Keulen, H. and Brandenburg, W.A., 2011. Polyunsaturated fatty acids in variousmacroalgal species from North Atlantic and tropical seas. Lipids Health Dis. Vol. 10, No. 8.
42
Wells, M.L.; Potin, P.; Craigie, J.S.; Raven, J.A.; Merchant, S.S.; Helliwell. K.E.;Smith, A.G.; Camire, M.E. and Brawley, S.H., 2017. Algae as nutritional and functional food sources: revisiting our understanding. J Appl Phycol. Vol. 29, pp: 949-982.
43
Banzemir, A.; Blume, M.; Schroder, S. and Lindequist, U., 2006. Screening of cultivated seaweeds for antibacterial communities, USA.Biotechnol Biotechnol Equip. Vol. 29, No. 2, pp: 281-288.
44
Cruz-Suárez, L.E.; Tapia-Salazar, M.; Villarreal-Cavazos, D.; Beltran-Rocha, J.; Nieto López, M.G.; Lemme, M. and Ricque-Marie, D., 2009. Apparent dry matter, energy, protein and amino acid digestibility of four soybean ingredients in white shrimp Litopenaeus vannamei juveniles.Aquaculture. Vol. 292, pp: 87-94.
45
FAO. 2009. http://www.fao.org/docrep/006/J2084e/j2084e06. htm.
46
Fitton J.H., 2006. Antiviral properties of marine algae. In: Critchley, A.T.; Ohno, M. and Largo, D.B., Eds, World Seaweed Resources. ETI Information Services, Workingham, UK. 7 p.
47
Guiry, M., 2010. Seaweed and Chinese medicine; the nutritional and medicinal value of seaweeds used in chinese medicine. Seaweed site from Michael. pp: 358-394.
48
Praiboon, J.; Chirapart, A.; Akakabe, Y.; Bhumibhamon, O. and Kajiwara, T., 2006. Physical and chemical characterization of agar polysaccharides extracted from the Thai and Japanese species of Gracilaria. Sci Asia. Vol. 32, pp: 11-17.
49
Wen, X.; Peng, C.; Zhou, H.; Lin, Z.; Lin, G.; Chen, S. and Li, P., 2006. Nutritional composition and assessment of Gracilaria lemaneiformis Bory.Journal Plant Biology. Vol. 48, pp: 1047-1053.
50
Zheng, K.; Liang, M.; Yao, H.; Wang, J. and Chang, Q., 2012. Effect of dietary fish protein hydrolysate on growth, feed utilization and IGF-I levels of Japanese flounder. Aquaculture Nutrition. Vol. 18, pp: 297-303.
51
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر ریزپوشانی باکتری لاکتوباسیلوس پلانتاروم با آلژینات/کیتوزان بر شاخص های رشد و فعالیت آنزیم های گوارشی ماهی باس دریایی آسیایی (Lates calcarifer)
استفاده از پروبیوتیک ها در آبزی پروری به دلیل اثرات مفید در سلامت ماهی رشد فزاینده ای داشته است. یکی از مشکلات اصلی استفاده از پروبیوتیک ها غیرفعال شدن آن ها در شرایط معده ای – روده ای ماهی است. محافظت پروبیوتیک ها با ریزذرات زیست تخریب پذیر توان پروبیوتیکی آن ها را بهبود می بخشد. لذا در این تحقیق اثر ریزپوشانی باکتری پروبیوتیکی لاکتوباسیلوس پلانتاروم (Lactobacillus plantarum) با نانوذرات آلژینات/کیتوزان بر عملکرد رشد و فعالیت آنزیم های گوارشی در ماهی باس دریایی جوان Lates caclalifer ارزیابی شد. بدین منظور تعداد 360 قطعه ماهی باس دریایی با میانگین وزنی 2/8±37/2 گرم به چهار تیمار در سه تکرار به صورت زیر تقسیم شدند: تیمار T1 با خوراک حاوی باکتری لاکتوباسیلوس پلانتاروم بدون پوشش، T2 با خوراک حاوی باکتری لاکتوباسیلوس پلانتاروم ریزپوشانی شده T3 با خوراک حاوی آلژینات/کیتوزان و گروه شاهد با خوراک پایه تغذیه شدند. ماهیان به مدت 60 روز با جیره های آزمایشی تغذیه شدند. نمونه گیری از ماهی ها در روزهای 30 و 60 تحقیق انجام گرفت و فعالیت آنزیم های گوارشی و شاخص های رشد مورد بررسی قرار گرفتند. نتایج مرحله اول تحقیق نشان داد بیش ترین میزان فعالیت آنزیم های گوارشی مانند آلفا آمیلاز و فسفاتاز قلیایی در تیمار تغذیه شده با آلژینات/کیتوزان و لاکتوباسیلوس پلانتاروم ریزپوشانی نشده در روزهای 30 و 60 وجود دارد، اما بیش ترین میزان عملکرد رشد در تیمار تغذیه شده با لاکتوباسیلوس پلانتاروم ریزپوشانی شده در روز 60 مشاهده شد. به نظر می رسد ریزپوشانی باکتری با نانوذرات کیتوزان/آلژینات کارایی پروبیوتیکی باکتری لاکتوباسیلوس پلانتاروم را بهبود بخشد (0/05>p ) و توانست عملکرد مثبت پروبیوتیکی را در رشد ماهی باس دریایی بهبود بخشد هرچند این نتایج با نتایج مربوط به فعالیت آنزیم های گوارشی هم خوانی نداشت.
http://www.aejournal.ir/article_114800_a7bd7aa7c8488f4de24b176618c9c835.pdf
2020-09-22
197
206
10.22034/aej.2020.114800
لاکتوباسیلوس پلانتاروم
کیتوزان/آلژینات
آنزیم های گوارشی
مصطفی
قلی پور
shrimp748@yahoo.com
1
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
سیاوش
سلطانیان
siyavashsoltanian@yahoo.com
2
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
LEAD_AUTHOR
مصطفی
اخلاقی
3
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
مجتبی
علیشاهی
alishahim.@scu.ac.ir
4
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
مریم
میربخش
5
مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
حمیدرضا
قیصری
6
گروه بهداشت و کنترل مواد غذایی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
محمدیان، ت.، 1392. ارزیابی توان پروبیوتیکی و تحریک کنندگی ایمنی برخی لاکتوباسیل های جدا شده از روده ماهی شیربت (Tor grypus). پایان نامه دکترای PhD بهداشت آبزیان از دانشگاه شهید چمران اهواز. شماره 9258956.
1
Abumourad, I.; Abbas, T.; Awaad, E.; Authman, M.; El Shafei, K.; Sharaf, O.M.; Ibrahim, G.A.; Sadek, Z.I. and El-Sayed, H.S., 2013. Evaluation of Lactobacillus plantarum as a probiotic in aquaculture: Emphasis on growth performance and innate immunity. Journal of Applied Sciences Research. Vol. 9, No. 1, pp: 572-582.
2
Ashouri, G.; Soofiani, N.M.; Hoseinifar, S.H.; Jalali, S.A.H.; Morshedi, V.; Van Doan, H. and Mozanzadeh, M.T., 2018. Combined effects of dietary low molecular weight sodium alginate and Pediococcus acidilactici MA18/5M on growth performance, haematological and innate immune responses of Asian sea bass (Lates calcalifer) juveniles. Fish and shellfish immunology. Vol. 79, pp: 34-41.
3
Azari, A.H.; Hashim, R.; Rezaei, M.H.; Baei, M.S.; Najafpour, S.; Roohi, A. and Darvishi, M., 2011. The effects of commercial probiotic and prebiotic usage on growth performance, body composition and digestive enzyme activities in juvenile rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). World Applied Sciences Journal. Vol. 14, pp: 26-35.
4
Badoei-Dalfard, A. and Karami, Z., 2013. Screening and isolation of an organic solvent tolerant-protease from Bacillus sp. JER02: activity optimization by response surface methodology. Journal of Molecular Catalysis B: Enzymatic. Vol. 89, pp: 15-23.
5
Bernfeld, P., 1951. Amylases α and β. In methods in enzymology, vol.1 (Colowick, P. and Kaplan, N.O., eds), New York: Academic press. pp: 149-157.
6
Blottiere, H.M.; Buecher, B.; Galmiche, J.P. and Cherbut, C., 2007. Molecular analysis of the effect of short-chain fatty acids on intestinal cell proliferation. Proceedings of the Nutrition Society. Vol. 62, pp: 101-106.
7
Cahu, C.L.; Zambonino Infante, J.L.; Quazuguel, P. and Le Gall, M.M., 1999. Protein hydrolysate vs. fish meal in compound diets for 10-day old sea bass Dicentrarchus labrax larvae. Aquaculture. Vol. 171, pp: 109-119.
8
Essa, M.A.; El-Serafy, S.S.; El-Ezabi, M.M.; Daboor, S.M.; Esmael, N.A. and Lall, S.P., 2010. Effect of different dietary probiotics on growth, feed utilization and digestive enzymes activities of Nile Tilapia, Oreochromis niloticus. Journal of the Arabian Aquaculture Society. Vol. 5, No. 2, pp: 143-161.
9
FAO. 2010. The State of World Fisheries and Aquaculture 2009. Rome. 180 p.
10
Fuller, R., 1989. Probiotics in man and animals. J. Appl. Bacteriol. Vol. 66, pp: 365-378.
11
Geng, X.; Dong, X.H.; Tan, B.P.; Yang, Q.H.; Chi, S.Y. and Liu, H.Y., 2012. Effects of dietary probiotic on the growth performance, non-specific immunity and disease resistance of cobia, Rachycentron canadum. Aquacult Nutr. Vol. 18, pp: 46-55.
12
Gopalakannan, A. and Arul, V., 2006. Immunomodulatory effects of dietary intake of chitin, chitosan and levamisole on the immune system of Cyprinus carpio and control of Aeromonas hydrophila infection in ponds. Aquaculture. Vol. 255, No. 1-4, pp: 179-187.
13
Huiyi, S.; Weiting, Y.; Meng, G; Xiudong, L. and Xiaojun, M., 2013. Microencapsulated probiotics using emulsification technique coupled with internal or external gelation process. Carbohydrate Polymers. Vol. 96, pp: 181-189.
14
Ichikawa, H.; Kuroiwa, T.; Inagaki, A.; Shineha, R.; Nishihira, T.; Satomi, S. and Sakata, T., 1999. Probiotic bacteria stimulate gut epithelial cell proliferation in rat. Digestive Diseases and Sciences. Vol. 44, pp: 2119-2123.
15
Kailasapathy, K., 2002. Microencapsulation of probiotic bacteria: technology and potential applications. Current issues in intestinal microbiology. Vol. 3, No. 2, pp: 39-48.
16
Karimi, R.; Mortazavian, A.M. and Amiri-Rigi, A., 2012. Selective enumeration of probiotic microorganisms in cheese. Food Microbiology. Vol. 29, No. 1, pp: 1-9.
17
Kullisaar, T.; Songisepp, E.; Aunapuu, M.; Kilk, K.; Arend, A. and Mikelsaar, M., 2003. Antioxidative probiotic fermented goats' milk decreases oxidative stress- mediated atherogenicity in human subjects. Br J Nutr. Vol. 90, No. 2, pp: 449-456.
18
Kuz’mina, V.V.; Shekovtsova, N. and Bolobonina, V., 2010. Activity dynamics of proteinases and glycosidases of fish chyme with exposure in fresh and brackish water. Biology Bulletin. Vol. 37, pp: 605-611.
19
Marlida, R.; Agus Suprayudi, M.; Widanarni, A. and Harris, E., 2014. Isolation, selection and application of probiotic bacteria for improvement the growth performance of humpback grouper (Cormileptes altivelis). International Journal of Sciences: Basic and Applied Research (IJSBAR). Vol. 16, No. 1, pp: 364-379.
20
Mohammadian, T.; Alishahi, M.; Tabandeh, M.; Ghorbanpoor, M. and Gharibi, D., 2017. Effect of Lactobacillus plantarum and Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus on growth performance, gut microbial flora and digestive enzymes activities in Tor grypus (Karaman, 1971). Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 16, No. 1, pp: 296-317.
21
Pelicano, E.R.L.; Souza, P.A.; Souza, H.B.A.; Figueiredo, D.F.; Boiago, M.M.; Carvalho, S.R. and Bordon, V.F., 2005. Intestinal mucosa development in broiler chickens fed natural growth promoters. Revista Brasileira de Ciencia Accola. Vol. 7, pp: 221-229.
22
Pirarat, N.; Pinpimai, K.; Endo, M.; Katagiri, T.; Ponpornpisit, A.; Chansue, N. and Maita, M., 2011. Modulation of intestinal morphology and immunity in nile tilapia (Oreochromis niloticus) by Lactobacillus rhamnosus GG. Research in Veterinary Science. Vol. 91, pp: 92-97.
23
Rungruangsak‐Torrissen, K.; Rustad, A.; Sunde, J.; Eiane, S.A.; Jensen, H.B.; Opstvedt, J.; Nygård, E.; Samuelsen, T.A.; Mundheim, H. and Luzzana, U., 2002. In vitro digestibility based on fish crude enzyme extract for prediction of feed quality in growth trials. Journal of the Science of Food and Agriculture. Vol. 82, pp: 644-654.
24
Shiau, S.Y. and Yu, Y.P., 1999. Dietary supplementation of chitin and chitosan depresses growth in tilapia, Oreochromis niloticus×O. aureus. Aquaculture. Vol. 4, pp: 439-446.
25
Tafi, A.A. and Meshkini, S., 2015. Investigating effects of different values of Chitosan polysaccharide on growth parameters in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss).
26
Tovar-Ramírez, D.; Zambonino, J.; Cahu, C.; Gatesoupe, F.J.; Vázquez-Juárez, R. and Lésel, R., 2002 Effect of live yeast incorporation in compound diet on digestive enzyme activity in sea bass (Dicentrarchus labrax) larvae. Aquaculture. Vol. 204, pp: 113-123.
27
Tripathi, M.K. and Giri, S.K., 2014. Probiotic functional foods: Survival of probiotics during processing and storage. Journal of functional foods. Vol. 9, pp: 225-241.
28
Worthington, C.C., 1991. Worthington. Manual Related Biochemical.3th Edition. Freehold, New Jerse. pp: 80-85.
29
ORIGINAL_ARTICLE
جداسازی و شناسایی ترکیب اسیدهای آمینه در گوشت ماهی کپور دریایی (Cyprinus carpio) حوزه جنوبی دریای خزر
مطالعه حاضر به منظور جداسازی و تشخیص اسیدهای آمینه ضروری موجود در بافت عضله ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) صورت گرفت. بدین منظوردر سال 1397 تعداد سه قطعه ماهی کپورمعمولی از پره های مستقر در سواحل جنوبی دریای خزر نمونه برداری و پس از زیست سنجی، بافت هدف (عضله) ماهیان جداسازی و در مخزن ازت با دمای 196- درجه سانتی گراد نگه داری شدند. در آزمایشگاه، جهت استخراج پروتئین از روش حل کردن/ رسوب دادن در نقطه ایزوالکتریک، تبدیل پروتئین به اسیدآمینه با روش هیدرولیز اسیدی و برای جداسازی اسیدهای آمینه ضروری از روش کروماتوگرافی لایه نازک استفاده گردید. در این روش از صفحات تجاری TLC Silica gel 60F254 (ساخت شرکت مرک آلمان) به عنوان فاز ساکن و از فاز متحرک (بوتانل/اسید استیک/آب) به نسبت های (1:2:4) تهیه و جهت آشکارسازی اسیدهای آمینه از معرف نین هیدرین استفاده گردید. مقدارکمی اسیدهای آمینه و فاکتور بازداری (Rf) آن ها محاسبه گردید. فاز متحرک و ساکن بهینه سازی شده و با کیفیت بالا جداسازی را نشان می دهد. یافته ها به روش کروماتوگرافی لایه نازک (TLC) نشان دادند که تمامی اسیدهای آمینه ضروری (آرژنین، هیستیدین، فنیل آلانین، ایزولوسین، ترئونین، والین، لوسین، متیونین و لیزین) در بافت عضله ماهی کپور وجود دارد. اسیدآمینه تریپتوفان به دلیل هیدرولیز اسیدی تخریب و مشاهده نگردید. ارزیابی ترکیب 17 اسیدآمینه ضروری و غیرضروری به وسیله کروماتوگرافی مایع با عملکرد بالا (HPLC) اختلاف معنی داری را بین اسیدهای آمینه نشان داد به طوری که بیش ترین میزان اسیدآمینه در گوشت ماهی کپور به لیزین وگلوتامیک اسید و کم ترین میزان به آسپارتیک اسید و متیونین اختصاص دارد. بنابراین با توجه به عدم توانایی بدن انسان در ساخت اسیدهای آمینه ضروری، مصرف کپورماهیان در جیره غذایی می تواند به عنوان تامین کننده نیازهای تغدیه ای انسان در رشد، تولید انرژی، عضله سازی و درمان بسیاری از بیماری ها به شمار آید.
http://www.aejournal.ir/article_115473_f4027199e4634496cac75510635118bd.pdf
2020-09-22
207
214
10.22034/aej.2020.115473
اسیدآمینه
دریای خزر
کپور دریایی
کروماتوگرافی لایه نازک (TLC)
HPLC
انوار
بحرانی
anvar_bahrani@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
رسول
قربانی
rasulghorbani@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
جمشید
فولادی
jfooladi@alzahra.ac.ir
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه الزهراء، تهران، ایران
AUTHOR
سعید
نوجوان
s_nojavan@sbu.ac.ir
4
گروه شیمی، دانشکده علوم شیمی و نفت، دانشگاه شهیدبهشتی، تهران، ایران
AUTHOR
آووجا، س.، 2003. کروماتوگرافی و جداسازی، ترجمه طهماسبی، ر. و حسین زاده، ر.، 1392. چاپ اول، تهران، فدک ایستاتیس. 253 صفحه.
1
حق پناه، ع.؛ قروی، ب. و ایری، ی.، 1396. ﺑﺮرﺳﯽ اﻣﮑﺎن ﭘﺮورش ﻣﺎﻫﯽ ﮐﭙﻮر درﯾﺎﯾﯽ (Cyprinus carpio Linnaeus 1758) در اﺳﺘﺨﺮﻫﺎی ﺧﺎﮐﯽ آب ﺷﯿﺮﯾﻦ در اﺳﺘﺎن ﮔﻠﺴﺘﺎن. مجله بهره برداری و پرورش آبزیان. دوره 6، شماره 3، صفحات 43 تا 49.
2
خانی، م.؛ انصاری فرد، س. و خوشخو، ژ.، 1391. ﺑﺮرﺳﻲ ﺗﻐﻴﻴﺮات آﻣﻴﻨﻮاﺳﻴﺪﻫﺎ در ﻓﻴﻠﻪ ﻛﭙﻮرﻣﻌﻤﻮﻟﻲ ﭘﺮورﺷﻲ Cyprinus carpio در ﻃﻲ 6 ماه نگه داری در سردخانه در دمای 18- سانتی گراد. مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. دوره 2، صفحات 79 تا 88.
3
سوداگر، م.؛ فرحی، ا.؛ یوسفی سیاه کلرودی، س.؛ مازندرانی، م.؛ دادگر، ش. و اجاق، م.، 1397. مقایسه عملکرد رشد، بازده فیله و پروفیل اسیدهای آمینه ماهیان کپورمعمولی پرورشی (Cyprinus carpio) و گورامی عظیم الجثه (Osphronemus goramy) پرورش یافته در استخرهای بتونی. نشریه علوم آبزی پروری. دوره 6، شماره 8، صفحات 33 تا 41.
4
خنیفر، ژ.؛ احمدی، ع.؛ قورچیان، ه.ا.؛ حاجی حسینی، ر.؛ شیخها، م.ح. و حقیرالسادات، ب.ف.، 1392. ﻣﻘﺎﻳﺴﻪ اﺳﻴﺪﻫﺎی آﻣﻴﻨﻪ ﺿﺮوری و ﻏﻴﺮﺿﺮوری در ﭘﺮوﺗﺌﻴﻦ ﻣﻴﻜﺮوﺑﻲ ﺣﺎﺻﻞ از ﻛﺸﺖ ﭘﻠﻮروﺗﻮس ﻓﻠﻮرﻳﺪا ﺑﺮ روی ﺿﺎﻳﻌﺎت ﻟﻴﮕﻨﻮﺳﻠﻮﻟﺰی. مجله پزشکی هرمزگان. دوره 17، شماره 2، صفحات 113 تا 120.
5
دادگر، ش.؛ صالحی، ح.؛ حاجی میررحیمی، س.د. و تیموری، م.، 1393. سنجش سرانه مصرف آبزیان و ارزیابی موانع و راه کارهای توسعه مصرف در استان مرکزی. مجله علمی شیلات ایران. دوره 23، شماره 4، صفحات 17 تا 28.
6
ذاکری، م.؛ کوچهین، پ. و غفله مرمضی، ج.، 1391. مقایسه ترکیب اسیدهای آمینه در بافت ماهیچه ماهیان وحشی و پرورشی نر و ماده شانگ زرد باله. مجله علوم و فنون دریایی. دوره 11، شماره 2، صفحات 58 تا 66.
7
عوض پور، م.؛ سیفی پور، ف.؛ عبدی، ج.؛ نبوی، ت. و زمانیان عضدی، م.، 1392. ﺟﺪاﺳﺎزی رﻧﮓ ﻫﺎی ﺧﻮراﮐﯽ از ﻓﺮاوردهﻫﺎی ﻗﻨﺎدی ﺑﻪ روش ﮐﺮوﻣﺎﺗﻮﮔﺮاﻓﯽ ﺑﺎ ﻻﯾﻪ ﻧﺎزک. مجله علوم تغذیه و صنایع غذایی ایران. دوره 8، شماره 3، صفحات 73 تا 78.
8
قلیچ پور، م.؛ شعبانی، ع. و شعبانپور، ب.، 1389. ﻣﻘﺎﻳﺴﻪ ﺳﺎﺧﺘﺎر ژﻧﺘﻴﻜﻲ دو ﺟﻤﻌﻴﺖ ﻛﭙﻮرﻣﻌﻤﻮﻟﻲ (Cyprinus carpio) در ﻣﻨﺎﻃﻖ ﻗﺮهﺳﻮ و اﻧﺰﻟﻲ ﺑﺎ اﺳﺘﻔﺎده از هشت نشانگر ریزماهواره. مجله تاکسونومی و بیوسیستماتیک. دوره 2، شماره 5، صفحات 41 تا 48.
9
قربانی، ر.؛ یلقی، س. و عقیلی، ک.، 1389. بررسی و تحلیل وضعیت صید شرکت های تعاونی صید پره ماهیان استخوانی استان گلستان در سال بهره برداری 1385-1384. مجله شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد آزادشهر. سال 4، شماره 3، صفحات 39 تا 47.
10
قمی، م.ر.؛ جدیددخانی، د. و حسن دوست، م.، 1390. مقایسه پروفیل اسیدچرب و اسیدآمینه و ترکیب شیمیایی لاشه در ماهیان قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)، کپورمعمولی (Cyprinus carpio) و ماهی سفیددریای خزر (Rutilus frisii kutum). مجله شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی. واحد آزادشهر. دوره 5، شماره 4، صفحات 1 تا 16.
11
گورابی، ر.ط. و حسینی، س.و.، 1397. اهمیّت مصرف ماهی در پیشگیری از بیماری ها. مجله علمی دانشگاه علوم پژشکی بیرجند. دوره 25، شماره 1، صفحات 1 تا 9.
12
محسنی اژیه، ع.؛ نوجوان، س. و قاسمپور، ع.،1393. بررسی روش های مختلف کروماتوگرافی تهی های برای خالص سازی اسیدهای آمینه حاصل از هیدرولیز پروتئین های رودهای از منابع طبیعی. پایان نامه کارشناسی ارشد شیمی تجزیه (دانشگاه شهید بهشتی). 73 صفحه.
13
نوروزی، م.؛ مرشدی، ح. و قدرتی، ش.، 1394. تعیین ارزش غذایی ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio Linnaeus1758) در دوره استراحت جنسی (پاییز) و رسیدگی جنسی (بهار) در دو منطقه بندرانزلی و بهشهر. نشریه توسعه آبزی پروری. دوره 9، شماره 1، صفحات 81 تا 91.
14
یوسفی، م.؛ نادری، م. و بهراد، ز.، 1392. مقدمه ای بر کروماتوگرافی مایع با کارایی بالا کاربرد آن در جداسازی نانوذرات طلا. فصلنامه تخصصی دانش آزمایشگاهی ایران. دوره 1، صفحات 37 تا 45.
15
Bushan, R.; Martens J. and Batra, S., 2014. Amino Acids Thin-Layer (Planar) Chromatography. Reference Module in Chemistry, Molecular Sciences and Chemical Engineering. Elsevier. pp: 1-27.
16
Borresen, T., 1992. Quality of Wild and reared fish. In: Huss, H.H., M. Jacobsen and J. Liston (Eds.). Quality assurance in the food industry. Elsevier, Amsterdam. pp: 1-17.
17
Chen, Y.C.; Tou, J.C. and Jaczynski, J., 2009. Amino acid and mineral composition of protein and other components and their recovery yields from whole Antarctic krill (Euphausia superba) using isoelectric solubilization/ precipitation. Journal of Food Science. Vol. 74, No. 2, pp: 31-39.
18
Erdem, M.; Baki, B. and Samsun, S., 2009. Fatty acid and Amino acid compositions of Cultured and wild Sea Bass from different Regions in Turkey. Journal of Animal and Veterinary Advances. Vol. 8, No. 10, pp: 1959-1963.
19
Fernandes Coutinho, F., 2017. Potential benefits of functional amino acids in fish nutrition. Departamento de Biologia. 105 p.
20
Hardy, P.M., 1985. The protein amino acids. In: chemistry and biochemistry of the amino acids (Barrette, G.C., ed.). Chapman and Hall, London. pp: 6-24.
21
Jeya, S.R.; Vasundhara, T.S. and Kumudavally,K.V., 2001. A comparison of the TLC-densitometry and HPLC method for the determination of biogenic amines in fish and fishery products. ElSEVIER, Food Chemistry. Vol. 75, pp :255-259.
22
Kaushik, S.J. and Seiliez, I., 2010. Protein and amino acid nutrition and metabolism in fish: current knowledge and future needs. Aquaculture Research. Vol. 41, pp: 322-332. doi:10.1111/j.1365-2109.2009.02174.x
23
Akram, M.; Asif, H.M.; Uzair, M.; Akhtar, N.; Madni, A.; Ali Shah, S.M.; ul Hasan, Z. and Ullah, A., 2011. Amino acids: A review article. Journal of Medicinal Plants Research. Vol. 5, No. 17, pp: 3997-4000.
24
Mohanty, B.; Mahanty, A.; Ganguly, S. and Sankar, T.V., 2014. Amino Acid Compositions of 27 Food Fishes and Their Importance in Clinical Nutrition. Journal of Amino Acids. pp: 1-7.
25
Peng, L.; Kangsen, M.; Trushenski, J. and Guoyao, W., 2008. New developments in fish amino acid nutrition: towards functional and environmentally oriented aquafeeds. DOI 10.1007/s00726-008-0171-1.
26
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی برخی شاخصه های خون شناسی تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus) در مواجهه با نونیل فنل
هدف تحقیق حاضر تاثیر نونیل فنل به عنوان مونومر یک ماده آلاینده بر تغییرات شاخص های خون شناسی تاس ماهی ایرانی بود. تزریق تیمارهای متفاوت 10،1 و 100 میلی گرم بر کیلوگرم وزن بدن ماهی نونیل فنل به نمونه ماهیان با وزن متوسط 250 گرمی سه تکرار در سه هفته متوالی انجام شد. 72 ساعت پس از تزریق آخر، از ساقه دمی نمونه ها خونگیری به عمل آمد و برخی شاخص های خون شناسی شامل تعداد گلبول های سفید و قرمز خون، شمارش افتراقی سلول های سفید خونی و فاکتورهای ثانویه خون شناسی انجام شد. پس از شمارش، پایین بودن میزان هموگلوبولین، هماتوکریت و گلبول قرمز خون نسبت به گروه شاهد، دلیل در استرس بودن جانور ارزیابی شد زیرا که کاسته شدن پروتئین هموگلوبولین، تعداد گلبول های قرمزخون و هماتوکریت نشان دهنده شرایط کم خونی درشرایط مواجهه با ماده آلاینده می باشد. تعداد کل گلبول های سفید خونی در تیمارها نسبت به شاهد افزایش نشان داد. در شمارش افتراقی گلبول های سفید ائوزونوفیل در تیمارهای 10 و100 میلی گرم بر کیلوگرم وزن بدن ماهی نونیل فنل، افزایش معنی دار نشان داده و هم چنین نوتروفیل در تمامی تیمارها افزایش معنی دار نشان می دهد، لنفوسیت در تیمارهای 10 و100 میلی گرم بر کیلوگرم وزن بدن ماهی نونیل فنل افزایش معنی دار داشته است اما تغییر معنی داری در تعداد مونوسیت نسبت به گروه شاهد دیده نشد. شاخص های ثانویه خون شناسی (MEH،MEV، MEHC)تغییرات معنی داری در جهت افزایش داشته اند که مطابق با افزایش تعداد سلول های سفید خون بوده است.
http://www.aejournal.ir/article_115502_cabe58a18d572f81f95490d14b899ba7.pdf
2020-09-22
215
220
10.22034/aej.2020.115502
نونیل فنل
تاس ماهی ایرانی
شاخصه های خون شناسی
شیرین
جمشیدی
jamshidi99@yahoo.com
1
موسسه تحقیقات بین المللی تاسماهیان دریای خزر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
کلباسی مسجدشاهی
2
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
AUTHOR
مجید
صادقی زاده
3
گروه ژنتیک، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران
AUTHOR
محمدعلی
یزدانی ساداتی
4
موسسه تحقیقات بین المللی تاس ماهیان دریای خزر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
آرین فر، ف.؛ ابدالی، س.؛ سادات صادقی، م. و حلاجیان، ع.، 1392. مطالعه اثرات شوینده آنیونی (شامپو) بر پارارامترهای خونی بچه تاس ماهی شیپ (Acipenser nudiventris) پرورشی. فصلنامه علمی پژوهشی اکوبیولوژی تالاب، دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 5، شماره 18، صفحات 33 تا 44.
1
سوری نژاد، ا.؛ کلباسی، م.ر. و سلطان کریمی، س.، 1386. بررسی تاثیر القا تریپلوئیدی بر تغییرات برخی شاخص های خون شناسی ماهیان تمام ماهی قزل آلای رنگین کمان در فصل زمستان. مجله ژنتیک نوین. دوره 2، شماره 2، صفحات 51 تا 58.
2
Ahel, M.; Giger, W. and Koch, M., 1994. Behaviour of alkylphenol polyethoxylate surfactants in the aquatic environment-I. Occurrence and transformation in sewage treatment. Water Research. Vol. 28, No. 5, pp: 1131-1142.
3
Alyakrinskyaya, I. and Dolgova, S., 1984. Hematological features of young sturgeons. Vopr Ikhtiol. Vol. 4, pp: 135-139.
4
Asadi, F.; Masoudifard, M.; Vajhi, A.; Lee, K.; Pourkabir, M. and Khazraeinia, P., 2006. Serum biochemical parameters of Acipenser persicus. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 32, No. 1, pp: 43-47.
5
Bahmani, M., 1998. Phylogenic and systematic study on sturgeons. Iranian scientific fisheries journal. Vol. 7, No. 2, pp: 9-30.
6
Bahmani, M.; Kazemi, R. and Donskaya, P., 2001. A comparative study of some hematological features in young reared sturgeons (Acipenser persicus and Huso huso). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 24, No. 2, pp: 135-140.
7
Bahmani, M.; Oryan, S.; Pourkazemi, M. and Vosoughi, G., 1999. Effects of ecophysiological stress on cellular immunity system of Persian sturgeon Acipenser persicus, 14th Iranian Congress of Physiology and Pharmacology. pp: 16-20.
8
Chen, Z.; Meng, H.; Xing, G.; Chen, C.; Zhao, Y.; Jia, G.; Wang, T.; Yuan, H.; Ye, C. and Zhao, F., 2006. Acute toxicological effects of copper nanoparticles in vivo. Toxicology letters. Vol. 163, No. 2, pp: 109-120.
9
Domezain, A.; García‐Gallego, M.; Domezain, J. and Sanz, A., 1999. Evolution during growth of the biometry and the blood constants of Adriatic sturgeon, Acipenser naccarii. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 15, No. 4‐5, pp: 337-338.
10
Dorafshan, S.; Kalbassi, M.R.; Pourkazemi, M. and Mojazi Amiri, B., 2008. Effects of triploidy on the Caspian salmon, Salmo trutta caspius haematology. Fish Physiol Biochem. Vol. 34, pp: 195-200.
11
Drabkin, D.L. and Austin, J.H., 1935. Spectrophotometric studies II. Preparations from washed blood cells; nitric oxide hemoglobin and sulfhemoglobin. Journal of Biological Chemistry. Vol. 112, No. 1, pp: 51-65.
12
Gabriel, U.; Ezeri, G. and Opabunmi, O., 2004. Influence of sex, source, health status and acclimation on the haematology of Clarias gariepinus (Burch, 1822). African Journal of Biotechnology. Vol. 3, No. 9, pp: 463-467.
13
Gong, Y. and Han, X.D., 2006. Nonylphenol-induced oxidative stress and cytotoxicity in testicular Sertoli cells. Reprod Toxicol. Vol. 22, pp: 623-630.
14
Hager, T.; Ismail1, H.; Heba, H. and Mahboub, H., 2016. Effect of acute exposure to nonylphenol on biochemical, hormonal, and hematological parameters and muscle tissues residues of Nile tilapia; Oreochromis niloticus. Vet World. Vol. 9, No. 6, pp: 616-625.
15
Houston, A.; Dobric, N. and Kahurananga, R., 1996. The nature of hematological response in fish. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 15, No. 4, pp: 339-347.
16
Ishikawa, N.M.; Ranzani-Paiva, M.J.T.; Lombardi, J.V. and Ferreira, C.M., 2007. Hematological parameters in Nile Tilápia, Oreochromis niloticus exposed to sub-letal concentrations of mercury. Brazilian archives of biology and technology. Vol. 50, No. 4, pp: 619-626.
17
Jafari, A.; Abasabad, R. and Salehzadeh, A., 2009. Endocrine disrupting contaminants in water resources and sewage in Hamadan City of Iran. Journal of Environmental Health Science & Engineering. Vol. 6, No. 2, pp: 89-96.
18
John, P.J., 2007. Alteration of certain blood parameters of freshwater teleost Mystus vittatus after chronic exposure to Metasystox and Sevin. Fish Physiol. Biochem. Vol. 33, pp: 15-20.
19
Luskova, V., 1995. Determination of normal values in fish hematology. Acta-Universitatis Carolinae Biologica. Vol. 39, pp: 191-200.
20
Madhu, S. and Pooja, C., 2015. Acute toxicity of 4-nonylphenol on haemotological profile of fresh water fish Channa punctatus. Research Journal of Recent Sciences. Vol. 2277, pp: 2502.
21
Mekkawy, I.A.; Mahmoud, U.M. and Sayed, A.E.D.H., 2011. Effects of 4-nonylphenol on blood cells of the African catfish Clarias gariepinus (Burchell, 1822). Tissue and Cell. Vol. 43, pp: 223-229.
22
Mishra, A. and Poddar, A., 2013. Haematology of freshwater Murrel (Channa punctatus Bloch), exposed to phenolic industrial wastes of the Bhilai steel plant (Chhattisgarh, India). Int. J. Sci. Eng. Res. Vol. 4, pp: 1866-1883.
23
Mortazavi, S.; Bakhtiari, A.R.; Sari, A.E.; Bahramifar, N. and Rahbarizade, F., 2012. Phenolic endocrine disrupting chemicals (EDCs) in Anzali Wetland, Iran: Elevated concentrations of 4-nonylphenol, octhylphenol and bisphenol A. Marine Pollution Bulletin. Vol. 64, No. 5, pp: 1067-1073.
24
Naylor, C.G.; Mieure, J.P.; Adams, W.J.; Weeks, J.A.; Castaldi, F.J.; Ogle, L.D. and Romano, R.R., 1992. Alkylphenol ethoxylates in the environment. Journal of the American Oil Chemists' Society. Vol. 69, No. 7, pp: 695-703.
25
Pourkazemi, M.; Bahmani, M.; Parvaneh, A.; Yusefiyan, M.; Amini, K.; Vahabi, Y.; Geraskin, P.; Metalov, G.; Romanov, A. and Aksiuinov, V., 1997. Report on the study on physiological principles in the selection of broodfish for restocking stellate sturgeon, A. stellatus. International Sturgeon Research Institute (in Persian), Rasht, Iran. pp: 695-703.
26
Reebs, S.G., 2009. Oxygen and fish behaviour. Universite de Moncton. Canada. 320 p.
27
Sharma, T.J. and Shi, B.D., 1985. Effects of asphyxiation on some hematologic values of Noemacheilus cupicula. International Journal of Academic of Ichthyology. Vol. 6, pp: 1-2.
28
Singh, N. and Srivastava, A., 1994. Formothion induced haematological changes in the freshwater Indian catfish Heteropneustes fossilis. Journal of Ecotoxicology and Environmental Monitoring. Vol. 4, No. 2, pp: 137-140.
29
Stoskopf, M., 1993. Clinical physiology, Philadelphia: WB Saunders Co. pp: 48-57.
30
Swift, D., 1981. Changes in selected blood component concentrations of rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson, exposed to hypoxia or sublethal concentrations of phenol or ammonia. Journal of Fish Biology. Vol. 19, No. 1, pp: 45-61.
31
Vosylienė, M.Z., 1999. The effect of heavy metals on haematological indices of fish (survey). Acta Zoologica Lituanica. Vol. 9, No. 2, pp: 76-82.
32
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات پربیوتیک دیواره سلولی مخمر (ایمنووال) بر پارامترهای رشد و خون شناسی تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus) جوان
در این مطالعه اثرات مکمل پربیوتیک ایمنووال بر عملکرد رشد و برخی پارامترهای خون شناسی تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus) بررسی گردید. بدین منظور، تاس ماهیان ایرانی جوان با میانگین وزن اولیه 0/39±47/78 در 9 مخزن (500 لیتری) در سه تیمار به همراه سه تکرار به طور تصادفی توزیع و با جیره پایه حاوی دو سطح از مکمل پربیوتیک ایمنووال شامل 0/5 و 1 درصد و جیره فاقد مکمل پربیوتیک (تیمار شاهد) طی هشت هفته تغذیه شدند. پس از پایان دوره تغذیه، اختلاف معنی داری در شاخص های رشد و تغذیه ماهیان مشاهده نگردید (0/05<p ). بررسی پارامترهای خون شناسی نشان داد که تعداد یاخته های قرمز(RBC) و هموگلوبین در ماهیان تغذیه شده با جیره حاوی 1 درصد مکمل پربیوتیک به طور معنی داری بالاتر از تیمار شاهد بود (0/05>p ). تفاوت معنی داری بین پارامترهای حجم متوسط یاخته قرمز (MCV)، میانگین هموگلوبین در سلول (MCH) و میانگین غلظت هموگلوبین در سلول (MCHC)، یاخته سفید خون، نوتروفیل، لنفوسیت و مونوسیت ها مشاهده نشد (0/05<p ). این مطالعه نشان داد که مصرف مکمل پربیوتیک ایمنووال در دو سطح 0/5 و 1 درصد اثر معنی داری بر پارامترهای رشد و کارایی ندارد. هم چنین استفاده از 1 درصد جیره حاوی مکمل پربیوتیک ایمنووال می تواند سبب تغییر معنی دار در برخی از پارامترهای خون شناسی تاس ماهیان ایرانی جوان شود. به منظور تأیید تأثیر مثبت پربیوتیک نیاز است که شاخص های بیوشیمیایی، پاسخ های ایمنی و هم چنین میزان زنده مانی ماهی در مواجهه با میکروب های بیماری زا مورد بررسی قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_115584_49e8fd655496093005def89ebf0147dc.pdf
2020-09-22
221
228
10.22034/aej.2020.115584
ایمنووال
پارامترهای رشد
پارامترهای خون شناسی
تاس ماهی ایرانی
مکمل پربیوتیک
سهیل
یوسفی
soheilu3fi@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
مریم
منصف شکری
monsef_shokri@yahoo.com
2
موسسه تحقیقات بین المللی تاس ماهیان دریای خزر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
LEAD_AUTHOR
حمید
علاف نویریان
navi@guilan.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
سید حسین
حسینی فر
hoseinifar@gau.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
Adel, M.; Nayak, S.; Lazado, C.C. and Yeganeh, S., 2016. Effects of dietary prebiotic GroBiotic® A on growth performance, plasma thyroid hormones and mucosal immunity of great sturgeon, Huso huso (Linnaeus, 1758). Journal of Applied Ichthyology. Vol. 32, No, 5, pp: 825-831.
1
Adeli, A. and Namdar, M., 2015. The Iranian caviar and its substitutes in the world market. Ecopersia. Vol. 3, No. 1, pp: 933-944.
2
Ai, Q.; Mai, K.; Tan, B.; Xu, W.; Duan, Q.; Ma, H. and Zhang, L., 2006. Replacement of fish meal by meat and bone meal in diets for large Yellow croaker (Pseudosciaena crocea). Aquaculture. Vol. 260, pp: 255-263.
3
Akbary, P. and Jahanbakhshi, A., 2018. Growth yield, survival, carcass quality, haematological, biochemical parameters and innate immune responses in the grey mullet (Mugil cephalus Linneaus, 1758) fingerling induced by Immunogen® prebiotic. Journal of Applied Animal Research, Vol. 46, No. 1, pp: 10-16.
4
Akter, M.N.; Sutriana A.; Talpur, A.D. and Hashim, R., 2016. Dietary supplementation with mannan oligosaccharide influences growth, digestive enzymes, gut morphology, and microbiota in juvenile striped catfish, (Pangasianodon hypophthalmus). Aquaculture International. Vol. 24, pp: 127-144.
5
Ali, S.R.; Ambasankar, K.; Praveena, E.; Nandakumar, S. and Syamadayal, J., 2017. Effect of dietary mannan oligosaccharide on growth, body composition, haematology and biochemical parameters of Asian seabass. Aquaculture Research. Vol. 48, No. 3, pp: 899-908.
6
Amirkolaie, A.K. and Rostami, B., 2015. Effects of Dietary Supplementation with Immunogen® on the Growth, Hematology and Gut Microbiota of Fingerling Common Carp (Cyprinus carpio, Linnaeus). Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 18, pp: 379-385.
7
Andrews, S.R.; Sahu, N.P.; Pal, A.K. and Kumar, S., 2009. Hematological modulation and growth of Labeo rohita fingerlings: effect of dietary mannan oligosaccharide, yeast extract, protein hydrolysate and chlorella. Aquaculture Research. Vol. 41, pp: 61-69.
8
Angulo, F., 2000. Antimicrobial agents in aquiculture: potential impact in public health. Enfermedades Infecciosas y Microbiología. Vol. 20, No. 6, pp: 217-219.
9
AOAC (Association of Official Analytical Chemists). 2012. Official Methods of Analysis of the Association of Official Analytical Chemists. Edited by GW Latimer Jr. 19th Ed. Association of Official Analytical Chemists, Arlington, VA, USA, 1263 P.
10
Aramli, M.S.; Kamangar, B. and Nazari, R.M., 2015. Effects of dietary β-glucan on the growth and innate immune response of juvenile Persian sturgeon, Acipenser persicus. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 47, No. 1, pp: 606-610.
11
Blaxhall, P.C. and Daisley, K.W., 1973. Routine haematological methods for use with fish blood. Journal of Fish Biology. Vol. 5, pp: 771-781.
12
Bledsoe, G.E.; Bledsoe, C.D. and Rasco, B., 2003. Caviars and fish roe products. Critical Reviews in Food Science Nutrition. Vol. 43, pp: 317-356.
13
Castro, R. and Tafalla, C., 2015. Overview of fish immunity. Edited by Beck, B.H. and Peatman, E., 1st Ed. Mucosal Health in Aquaculture, Academic Press, USA. pp: 3-55.
14
Dalmo, R.A. and Bøgwald, J., 2008. β-Glucans as conductors of immune symphonies. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 25, No. 4, pp: 384-396.
15
Dawood, M.A.O.; Koshio, S.; Ishikawa, M.; Yokoyama, S.; El Basuini, M.F.; Hossain, M.S.; Nhu, T.H.; Moss, A.S.; Dossou, S. and Wei, H., 2017. Dietary supplementation of β-glucan improves growth performance, the innate immune response and stress resistance of red sea bream. Aquaculture Nutrition. Vol. 23, pp: 148-159.
16
Dimitroglou, A.; Merrifield, D.L.; Moate, R.; Davies, S.J.; Spring, P.; Sweetman, J. and Bradley, G., 2009. Dietary mannan oligosaccharide supplementation modulates intestinal microbial ecology and improves gut morphology of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Journal of Animal Science. Vol. 87, No. 10, pp: 3226-3234.
17
Drabkin, D.l., 1950. Spectrophotometric studies. XV. Hydration of macro sized crystals of human hemoglobin, and osmotic concentrations in red cells. Journal of Biological Chemistry. Vol. 185, No. 1, pp: 231-45.
18
Ebrahimi, G.H.; Ouraji, H.; Khalesi, M.K.; Sudagar, M.; Barari, A.; Zarei Dangesaraki, M. and Jani Khalili, K.H., 2012. Effects of a prebiotic, Immunogen®, on feed utilization, body composition, immunity and resistance to Aeromonas hydrophila infection in the common carp Cyprinus carpio (Linnaeus) fingerlings. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition. Vol. 96, pp: 591-599.
19
FAO. 2016. FishStat-Software for Fishery Statistical Time Series. United Nations Food and Agriculture Organisation, Rome.http://fao.org/fishery/statistics/software/fishstatj/en.
20
Fazio, F.; Ferrantelli, V.; Fortino, G.; Arfuso, F.; Giangrosso, G. and Faggio, C., 2015. The influence of acute handling stress on some blood parameters in cultured sea bream (Sparus aurata Linnaeus, 1758). Italian Journal of Food Safety. Vol. 4, 1 p.
21
Geraylou, Z.; Souffreau, C.; Rurangwa, E.; De Meester, L.; Courtin, C.M.; Delcour, J.A. and Ollevier, F., 2013. Effects of dietary arabinoxylan-oligosaccharides (AXOS) and endogenous probiotics on the growth performance, non-specific immunity and gut microbiota of juvenile Siberian sturgeon (Acipenser baerii). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 35, No, 3, pp: 766-775.
22
Ghaedi, G.; Keyvanshokooh, S.; Mohammadi Azarma, H. and Akhlaghi, M., 2015. Effects of dietary β-glucan on maternal immunity and fry quality of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 441, pp: 78-83.
23
Ghiasi, F.; Mirzargar, S.S.; Badakhshan, H. and Shamsi, S., 2010. Effects of low concentration of cadmium on the level of lysozyme in serum, leukocyte count and phagocytic index in Cyprinus carpio under the wintering conditions. J of fisheries and Aquatic Science. Vol. 5, No, 2, pp: 113-119.
24
Guerreiro, I.; Serra, C.R.; Enes, P.; Couto, A.; Salvador, A.; Costas, B. and Oliva-Teles, A., 2016. Effect of short chain fructooligosaccharides (scFOS) on immunological status and gut microbiota of gilthead sea bream (Sparus aurata) reared at two temperatures. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 49, pp: 122-131.
25
Guerreiro,I.;Oliva-Teles, A. and Enes, P., 2018. Prebiotics as functional ingredients: focus on Mediterranean fish aquaculture. Reviews in aquaculture. Vol. 10, pp: 800-832.
26
Havixbeck, J.J. and Barreda, D.R., 2015. Neutrophil Development, Migration, and Function in Teleost Fish. Biology. Vol. 4, pp: 715-734.
27
Hevroy, E.M.; Espe, M.; Waagbo, R.; Sandness, K.; Rund, M. and Hemer, G.I., 2005. Nutrition utilization in Atlantic salmon (Salmo salar) fed increased level of fish protein hydrolysate during a period of fast growth. Aquaculture Nutrition. Vol. 11, pp: 301-313.
28
Hoseinifar, S.H.; Eshaghzadeh, H.; Vahabzadeh, H. and Peykaran Mana, N., 2015. Modulation of growth performances, survival, digestive enzyme activities and intestinal microbiota in common carp (Cyprinus carpio) larvae using short chain fructooligosaccharide. Aquaculture Research. Vol. 47, No. 10, pp: 3246-3253.
29
Hoseinifar, S.H.; Mirvaghefi, A.; Merrifield, D.L.; Amiri, B.M.; Yelghi, S. and Bastami, K.D., 2011. The study of some haematological and serum biochemical parameters of juvenile beluga (Huso huso) fed oligofructose. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 37, No. 1, pp: 91-96.
30
Jung-Schroers, V.; Adamek, M.; Jung, A.; Harris, S.; Doza, O. S.; Baumer, A. and Steinhagen, D., 2016. Feeding of beta-1,3/1,6-glucan increases the diversity of the intestinal microflora of carp (Cyprinus carpio). Aquaculture Nutrition. Vol. 22, pp: 1026-1039.
31
Jung-Schroers, V.; Adamek, M.; Harris, S.; Syakuri, H.; Jung, A.; Irnazarow, I. and Steinhagen, D., 2018. Response of the intestinal mucosal barrier of carp (Cyprinus carpio) to a bacterial challenge by Aeromonas hydrophila intubation after feeding with β-1,3/1,6-glucan. Journal of Fish Disease. Vol. 41, No. 7, pp: 1077-1092.
32
Kumari, J. and Sahoo, P.K., 2006. Dietary beta-1,3 glucan potentiates innate immunity and disease resistance of Asian catfish, Clarias batrachus (L.). Journal of Fish Diseases.
33
Vol. 29, pp: 95-101.
34
Lam, K.L. and Cheung, P.C.K., 2013. Non-digestible long chain beta-glucans as novel prebiotics. Bioactive Carbohydrates and Dietary Fibre. Vol. 2, pp: 45-64.
35
Li, P. and Gatlin, D.M., 2004. Dietary brewer's yeast and the prebioticGrobiotic®-Ainfluence growth performance, immune responses and resistance of hybrid striped bass (Morone chrysops × M. saxatilis) to Streptococcus iniae infection. Aquaculture. Vol. 231, pp: 445-456.
36
Machado, M.; Azeredo, R.; Díaz-Rosales, P.; Afonso, A.; Peres, H.; Oliva-Teles, A. and Costas. B., 2015. Dietary tryptophan and methionine as modulators of European seabass (Dicentrarchus labrax) immune status and inflammatory response, Fish and Shellfish Immunology. Vol. 42, pp: 353-362.
37
Merrifield, D.L.; Bradley, G.; Harper, G.M.; Baker, R.T.M.; Munn, C.B. and Davies, S.J., 2009. Assessment of the effects of vegetative and lyophilized pediococcus acidilactici on growth, feed utilization, intestinal colonization and health parameters of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture Nutrition. Vol. 17, pp.73-79.
38
Mohajer Esterabadi, M.; Vahabzadeh, H.; Zamani, A.A.; Soudagar, M. and Ghorbani, N.R., 2010. Effect of dietary immunogen prebiotics on growth and survival indices of giant sturgeon (Huso huso Linne, 1758) juveniles. Journal of Fisheries. Vol. 4, pp: 610-672.
39
Morshedi, V.; Agh, N.; Noori, F.; Jafari, F.; Tukmechi, A.; Marammazi, J. and Pagheh, E., 2018. Effects of dietary xylooligosaccharide on growth and feeding performance, body composition and physiological responses of sobaity seabream (Sparidentex hasta) juvenile. Aquaculture Nutrition. Vol. 24, pp: 1796-1803.
40
Mussatto, S.I. and Mancilha, I.M., 2007. Non-digestible oligosaccharides: a review. Carbohydrate polymers. Vol. 68, No. 3, pp: 587-597.
41
Osuigwe, D.I.; Obiekezie, A.I. and Onuoha, G.C., 2005. Some hematological changes in hybrid catfish (Heterobranchus longifilis × Clarias gariepinus) fed different dietary levels of raw and boiled jack bean (Canavalia ensiformis) seed meal. African Journal of Biotechnology. Vol. 4, pp: 1017-1021.
42
Poorbagher, H.; Hosseini, S.V.; Hosseini, S.M.; Aflaki, F. and Regenstein, J.M., 2017. Metal accumulation in Caspian sturgeons with different feeding niches, condition factor, body size & age. Microchemical journal. Vol. 132, pp: 43-48.
43
Pryor, G.S.; Royes, J.B.; Chapman, F.A. and Miles, R.D., 2003. Mannanoligosaccharides in fish nutrition: effects of dietary supplementation on growth and gastrointestinal villi structure in Gulf of Mexico sturgeon. North American Journal of Aquaculture. Vol. 65: pp: 106-111.
44
Ramezani, S.; Eshaghzadeh, H.; Saeimee, H. and Darvishi, S., 2018. Subyearling Siberian sturgeon Acipenser baerii fed a diet supplemented with ImmunoGen: Effects on growth performance, body composition, and hematological and serum biochemical parameters. Journal of Aquatic Animal Health. Vol. 30, No. 2, pp: 155-163.
45
Roberfroid, M.B., 2005. Introducing inulin-type fructans. British Journal of Nutrition. Vol. 93, No, 1, pp: 13-26.
46
Ross, L.G. and Ross, B., 1999. Anasthetic and sedative techniques for aquatic animals. Edited by LG Ross and B Ross. 2nd Ed. Blackwell Science, Oxford, UK. pp: 22-57.
47
Sado, R.Y.; Bicudo, A.J. and Cyrino, J.E., 2014. Growth and intestinal morphology of juvenile pacu Piaractus mesopotamicus (Holmberg 1887) fed dietary prebiotics (mannan oligosaccharides-MOS). Anais da Academia Brasileira de Ciências. Vol. 86, No. 3, pp: 1517-1524.
48
Salem, M.; Gaber, M.M.; Zaki, M.A.D. and Nour, A.A., 2016. Effects of dietary mannan oligosaccharides on growth, body composition and intestine of the sea bass (Dicentrarchus labrax L.). Aquaculture Research. Vol. 47, No. 11, pp: 3516-3525.
49
Sang, H.M.; Fotedar, R. and Filer, K., 2010. Effects of dietary mannan oligosaccharide on the survival, growth immunity and digestive enzyme activity of freshwater crayfish, Cherax destructor. Aquaculture Nutrition. Vol. 17, pp: 629-635.
50
Selvaraj, V.; Sampath, K. and Sekar, V., 2006. Adjuvant and immunostimulatory effects of beta-glucan administration in combination with lipopolysaccharide enhances survival and some immune parameters in carp challenged with Aeromonas hydrophila. Veterinary Immunology and Immunopathology. Vol. 114, pp: 14-24.
51
Shen, Y.; Wang, D.; Zhao, J. and Chen, X., 2018. Fish red blood cells express immune genes and responses. Aquaculture and Fisheries, Vol. 3, No. 1, pp: 14-21.
52
Soleimani, N.; Hoseinifar, S.H.; Merrifield, D.L.; Barati, M. and Abadi, Z.H., 2012. Dietary supplementation of fructooligosaccharide (FOS) improves the innate immune response, stress resistance, digestive enzyme activities and growth performance of Caspian roach (Rutilus rutilus) fry. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 32, No. 2, pp: 316-321.
53
Song, S.K.; Beck, B.R.; Kim, D.; Park, J.; Kim, J.; Kim, H.D. and Ringø, E., 2014. Prebiotics as immunostimulants in aquaculture: a review. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 40, No. 1, pp: 40-48.
54
Taati, R.; Soltani, M.; Bahmani, M. and Zamini, A.A., 2011. Effects of the prebiotics Immunoster and Immunowall on growth performance of juvenile beluga (Huso huso). J of Applied Ichthyology. Vol. 27, pp: 796-798.
55
Tacon, A.G.J., 1990. Standard Methods for the Nutrition and Feeding of Famed Fish and Shrimp. Argent Laboratories Press. Redmond. Washington, USA. Vol. 4, 24 P.
56
Wang, Q.; Cheng, L.; Liu, J.; Li, Z.; Xie, S. and De Silva, S.S., 2015. Freshwater aquaculture in PR China: trends and prospects. Review Aquaculture. Vol. 7, No. 4, pp: 283-302.
57
Welch, A.A.; Lund, E.; Amiano, P.; Dorronsoro, M.; Brustad, M. and Kumle, M., 2002. Variability of fish consumption within the 10 European countries participating in the European investigation into cancer and nutrition (EPIC) study. Public Health Nutrition. Vol. 5, pp: 1273-1285.
58
Welker, T.L.; Lim, C.; Yildirim-Aksoy, M.; Shelby, R. and Klesius, P.H., 2007. Immune response and resistance to stress and Edwardsiella ictaluri, fed diets containing commercial whole cell yeast or yeast subcomponents. Journal of The World Aquaculture Society. Vol. 38, pp: 24-35.
59
Wu, Y.; Liu, W.B.; Li, H.Y.; Xu, W.N.; He, J.X.; Li, X.F. and Jiang, G.Z., 2013. Effects of dietary supplementation of fructooligosaccharide on growth performance, body composition, intestinal enzymes activities and histology of blunt snout bream (Megalobrama amblycephala) fingerlings. Aquaculture Nutrition. Vol. 19, pp: 886-894.
60
Yarahmadi, P.; Farahmand, H.; Miandare, H.K.; Mirvaghefi, A. and Hoseinifar, S.H., 2014. The effects of dietary Immunogen® on innate immune response, immune related genes expression and disease resistance of rainbow trout. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 37, pp: 209-214.
61
Zhang, Q.; Yu, H.; Tong, T.; Tong, W.; Dong, L.; Xu, M. and Wang, Z., 2014. Dietary supplementation of Bacillus subtilis and fructooligosaccharide enhance the growth, non specific immunity of juvenile ovate pompano, Trachinotus ovatus and its disease resistance against Vibrio vulnificus. Fish and Shellfish Immunology. Vol.38, pp:7-14.
62
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی تنش اکسیژنی روی آسیب های بافت آبشش و طحال بچه ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspius)
ماهی آزاد دریایخزر یکی از با ارزش ترین ماهیان دریای خزر است و به دلیل بازارپسندی، شکل ظاهری و طعم گوشت از ارزش بالایی برخوردار است. این تحقیق به منظور تعیین اثر تنش های اکسیژنی روی آسیب شناسی بافتی آبشش و طحال بچه ماهی آزاد دریای خزر در مرکز تکثیر و پرورش آزاد ماهیان شهید باهنر کلاردشت در زمستان 1395 انجام شد. تعداد 210 قطعه بچه ماهی آزاد با میانگین وزنی 10±50 گرم به طور کاملاً تصادفی انتخاب شدند و در مخازن مجهز به هواده و کپسول اکسیژن قرار گرفتند. ماهیان در 3 تیمار 1 یا هیپوکسی: 2 تا 3 میلی گرم در لیتر اکسیژن، 2 یا نرموکسی: 7 تا 8 میلی گرم در لیتر اکسیژن (شاهد یا اکسیژن آب مرکز) و 3 یا هایپراکسی: 12 تا 14 میلی گرم در لیتر اکسیژن تقسیم شدند و هر تیمار دارای سه تکرار بود. در پایان آزمایش نمونه برداری از آبشش و طحال جهت ارزیابی آسیب های وارد شده انجام گرفت. نمونه آبشش و طحال برای بررسی هیستوپاتولوژیک به پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی- بندر انزلی انتقال داده شدند. نتایج بررسی اسلایدهای بافت آبشش و طحال نشان داد که علائم در همه تیمارها وجود دارد که این علائم شامل خونریزی، چماقی شدن یا پیچ خوردگی نوک لاملا، هایپرتروفی اپیتلیوم، هایپرپلازی موضعی و منتشر، نکروز، پرخونی، تلانژکتازی، به هم چسبیدگی لاملا و جدا شدن اپیتلیوم از لاملا در آبشش و پرخونی، نکروز، واکوئله شدن سیتوپلاسم سلول ها، هموسیدرین و سینوزوئیدها در طحال می باشد. در یک نتیجه گیری کلی می توان گفت که سطح اکسیژنی 7 تا 8 میلی گرم در لیتر، مطلوب ترین شرایط برای پرورش بچه ماهی آزاد دریای خزر می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_115600_6b92fcc39993270af5abb853faab4999.pdf
2020-09-22
229
240
10.22034/aej.2020.115600
ماهی آزاد دریای خزر
تنش اکسیژنی
آبشش
طحال
شقایق
رضاخانی
1
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
فلورا
محمدی زاده
fmohammadi13@gmail.com
2
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
حسین
خارا
h.khara1974@yahoo.com
3
گروه شیلات، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
LEAD_AUTHOR
امیرهوشنگ
بحری
amirbahri52@yahoo.com
4
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
محدثه
احمدنژاد
m_ahmadnehzad@yahoo.com
5
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
اسماعیلی ساری،ع.،1383. هیدروشیمی بنیان آبزی پروری. انتشارات اصلانی. 276 صفحه.
1
اعدلیان، ن.، 1388. اثر هیپوکسی بر ساختار آبشش ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). پایان نامه کارشناسی ارشد بیولوژی دریا، دانشگاه گیلان. 46 صفحه.
2
باقرزاده لاکانی، ف.؛ ستاری، م.؛ یزدانی ساداتی، م.ع.؛ کاظمی، ر. و جعفرزاده، ا.، 1391. اثرات سطوح مختلف اکسیژن بر رشد و ترکیب عضله در دو گروه وزنی از فیل ماهیان (Huso huso) پرورشی. مجله علوم و فنون دریایی. دوره 11، شماره 9، صفحات 13 تا 24.
3
باقرزاده لاکانی، ف.؛ ستاری، م.؛ کاظمی، ر.؛ یزدانی ساداتی، م.ع.؛ پوردهقانی، م. وعشوری، ق.، 1394. اثرات هیپوکسی، نورموکسی و هایپراکسی بر فاکتورهای هماتولوژی و پارامترهای بیوشیمیایی خون دو گروه وزنی از فیل ماهی (Huso huso) پرورشی. اقیانوس شناسی. سال 6، شماره 22، صفحات 59 تا 86.
4
باقرزاده لاکانی، ف.؛ ستاری، م.؛ شریف پور، ع.؛ کاظمی، ر. و حلاجیان، ع.، 1395. اثرات سطوح مختلف اکسیژن بر بافت طحال در دو گروه وزنی فیل ماهی (Huso huso). نشریه توسعه آبزی پروری. سال 10، شماره 2، صفحات 21 تا 30.
5
پوستی، آ. و صدیق مروستی، م.، 1378. اطلس بافت شناسی ماهی- اشکال طبیعی و آسیب شناسی. تالیف تاکاشی هایبیا. انتشارات دانشگاه تهران. 331 صفحه.
6
پوستی، آ.؛ ادیب مرادی، م. و فضیلی، آ.، 1382. بافت شناسی مقایسه ای و تکنیکهای بافت شناسی. انتشارات دانشگاه تهران. 546 صفحه.
7
ترمه یوسفی، ا.؛ خارا، ح. و احمدنژاد، م.، 1397. ارزیابی اثرات استرس های ناشی از آمونیاک روی فاکتورهای خونی، فاکتورهای استرس و بافت آبشش ماهی سوروم (Heros severus Heckel, 1840). مجله پژوهش های جانوری. دوره 31، شماره 2، صفحات 136 تا 146.
8
تکریمی، س.م.، 1386. اکولوژی دریایی. انتشارات مؤسسه آموزش عالی علمی-کاربردی. 209 صفحه.
9
حلاجیان، ع.؛ کاظمی، ر.؛ محسنی، م.؛ دژندیان، س.؛ یوسفی جوردهی، آ.؛ بهمنی، م.؛ پوردهقانی، م.؛ یزدانی، م.ع. و یگانه، ه.، 1390. تکه برداری به روش جراحی و مطالعه بافت شناسی گناد تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus) پرورشی. مجله تحقیقات دامپزشکی. شماره 3، صفحات 229 تا 233.
10
خورشیدی، ش.؛ خارا، ح. و احمدنژاد، م.، 1396. اثرات تنش های دمایی روی برخی فاکتورهای خونی، شاخص های استرس و هیستوپاتولوژیک آبشش قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 3، صفحات 219 تا 232.
11
رهاننده، م.؛ رهاننده، م.؛ حلاجیان، ع. و آوخ کیسمی، م.، 1398. مطالعه آسیب شناسی انگل Diclobothrium armatum در آبشش فیل ماهیان پرورشی در گیلان. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 11، شماره 3، صفحات 418-413.
12
ستاری، م.، 1381. ماهی شناسی (1): تشریح و فیزیولوژی. انتشارات نقش مهر. 659 صفحه.
13
شیبانی، م.ت.، 1384. بررسی ساختار میکروسکوپیک طحال و بافت های لنفاوی همراه دستگاه گوارش در ماهی قره برون. مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 60، شماره 1، صفحات 37 تا 42.
14
صیادبورانی، م.؛ مقصودیه کهن،ح.؛ زحمتکش کومله،ع.؛ ولیپور، ع.؛ دقیق روحی، ج. و عموزاده عمرانی، م.، 1391. بررسی امکان پرورش ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspius) در تراکم های مختلف با استفاده از آب دریای خزر. مجله توسعه آبزی پروری. شماره 2، صفحات 47 تا 55.
15
عابدی، م.؛ بنام، ص.؛ شهبازی ناصرآباد، س. و صفارشرق، آ.، 1395. آﺳﻴﺐ ﺷﻨﺎﺳﻲ بافت طحال تحت تاثیر ﺳﻄﻮح ﻣﺨﺘﻠﻒ اکسیژن در دو ﮔﺮوه وزنی ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio). چهارمین کنفرانس ماهی شناسی ایران. دانشگاه فردوسی مشهد.
16
فرخی، ف.؛ جمیلی، ش.؛ شهیدی، م.؛ ماشینچیان، ع. و وثوقی، غ.م.، 1395. بررسی هیستوپاتولوژیک حشره کش مالاتیون بر بافت های کبد و آبشش ماهی کلمه (Rutilus rutilus caspicus). فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 8، شماره 3، صفحات 259 تا 264.
17
قبادی، ش. و خدابخش، ا.، 1392. اثر رنگدانه گیاهی لوتئین بر فاکتورهای رشد، تغذیه، بقا و رنگ پذیری گوشت ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta c-aspius). مجله زیست شناسی دریا. دوره 18، صفحات 61 تا 70.
18
کبریتی، م.؛ پیغان،ر. و محمدیان، ب.، 1389. بررسی تلفات و ضایعات پاتولوژیکی ناشی از حمام نمک 24 ساعته در آبشش ماهیان انگشت قد کپور نقره ای (Hypophthalmichthys molitrix). فصلنامه تالاب. دوره 2، شماره 6، صفحات 56-49.
19
کوهکن، ا.، 1395. آسیب شناسی بافت آبشش ماهی بنی (Barbus sharpeyi) در مواجهه با سطوح مختلف شوری. مجله پاتوبیولوژی مقایسه ای. سال 13، شماره 1، صفحات 1855 تا 1862.
20
کیانی، ف.ز. و علیخانی، م.م.، 1398. تأثیرات فیزیولوژیک سم گلایفوزیت (رانداپ) بر بافت آبشش و کبد قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 11، شماره 4، صفحات 213 تا 222.
21
نصراله پور مقدم، م.؛ پورباقر،ه. و ایگدری، س.، 1395. بررسی اثرات دما و دفعات غذادهی بر تاثیر سایپرمترین در بافت آبشش ماهی آفانیوس صوفیا (Aphanius sophiae). فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 8، شماره 3، صفحات 229 تا 236.
22
Akhundov, M.M. and Fedorov, K.Ye., 1995. Effect of exogenous estradiol on ovarian development in juvenile starlet (Acipenser ruthenus). Journal of Ichthyology. Vol. 33, pp: 109-120.
23
Bagherzadeh Lakani, F.; Sattari, M.; Sharifpour, I. and Kazemi, R., 2013. Effect of hypoxia, normoxia and hyperoxia conditions on gill histopathology in two weight groups of beluga (Huso huso). Caspian Journal of Environmental Sciences. Vol. 11, No. 1, pp: 77-84.
24
Bahre kazemi, M.; Soltani, M.; Matinfar, A. and Abtahi, B., 2011. Biochemical and histological studies of over ripened oocyte in the Caspian brown trout (Salmo trutta caspius). Iranian journal of fisheries sciences. pp: 33-48.
25
Balasundaram, C., 2001. Histopathological screening of the tissues of the finish and shellfish harvested from the Valaichennai and Morgottanchemai Lagoon. Sri Lanka 6 Asian Fisheries Forum Book of Abstracts. Mayaman Townhomes 25 Mayaman St. Village, Quezan City, Philippinean Asian Fisheries Society. 20 P.
26
Barillet, S.; Larno, V.; Floriani, M.; Devaux, A. and Adam-Guillermin, Ch., 2010. Ultrastructural effects on gill, muscle, and gonadal tissues induced in zebrafish (Danio rerio) by a waterborne uranium exposure. Aquatic Toxicology. Vol. 100, pp: 295-302.
27
Bell, J.G. and Sargent, J.R., 2003. Arachidonic acid in aquaculture feeds: current status and future opportunities. Aquaculture. Vol. 218, pp: 491-499.
28
Bhagwant, S. and Elahee, K.B., 2002. Pathologic gill lesions in two edible lagoon fish species, Mulloidichthys flavolineatus and Mugil cephalus, from the bay of poudre d'or, Mauritius, Western Indian Ocean. Journal of Marine Science. Vol. 1, No. 1, pp: 35-42.
29
Bowden, A.J.; Gardiner, N.M.; Couturier, C.S.; Stecyk, J.A.; Nilsson, G.E.; Munday, P.L. and Rummer, J.L., 2014. Alterations in gill structure in tropical reef fishes as a result of elevated temperatures. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 175, pp: 64-71.
30
Boyd, C.E., 1982. Water quality management for pond fish culture. Elsevier Scientific Publishing Company. Amsterdam, the Netherlands. 318 P.
31
Brauner, C.J.; Seidelin, M.; Madsen, S.S. and Jensen, F.B., 2000. Effects of freshwater hyperoxia and hypercapnia and their influences on subsequent seawater transfer in Atlantic salmon (Salmo salar) smolts. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 57, pp: 2054-2064.
32
Brett, J.R. and Groves, T.D.D., 1979. Physiological energetics. In Fish Physiology. Edited by WS Hoar.; DJ Randall and JR Brett. Vol. VIII. Academic Press. New York. pp: 279-352.
33
Buentello, J.A.; Gatlin, D.M. and Neill, W.H., 2000. Effects of water temperature and dissolved oxygen on daily feed consumption, feed utilization and growth of channel catfish (Ictalurus punctatus). Aquaculture. Vol. 182, pp: 339-352.
34
Caliskan, M.; Erkmen, B. and Yerli, S.V., 2003. The effects of zeta cypermethrin on the gills of common guppy Lebistes reticulatus. Environmental Toxicology and Pharmacology. Vol. 14, pp: 117-120.
35
Cengiz, E.I., 2006. Gill and kidney histopathology in the freshwater fish Cyprinus carpio after acute exposure to deltamethrin. Environmental Toxicology and Pharmacology. Vol. 22, pp: 200-204.
36
Chandra, K.J., 1987. Fish health monitoring and control of disease. In training manual of training on integrated farming to the upazila fisheries officer. DOF. Bang. Vol. 1, 155 P.
37
De Silva, P.M.C.S. and Samayawardhena, L.A., 2002. Low concentrations of lorsban in water result in far reaching behavioral and histological effects in early life stages in guppy. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 53, pp: 248-254.
38
Farkas, J.; Christian, P.; Gallego-Urrea, J.A.; Roos, N.; Hassellov, M.; Tollefsen, K.E. and Thomas, K.V., 2011. Uptake and effects of manufactured silver nanoparticles in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) gill cells. Aquatic Toxicology. Vol. 101, pp: 117-125.
39
Fournie, J.W.; Summers, J.K.; Courtney, L.A.; Engle, V.D. and Blazer, V.S., 2001. Utility of splenic macrophage aggregates as an indicator of fish exposure to degraded environments. Journal of Aquatic Animal Health. Vol. 13, No. 2, pp: 105-116.
40
Gallaugher, P. and Farrell, A.P., 1998. Hematocrit and blood oxygen-carying capacity. Fish Physiology, 17, Fish Respiration. Academic Press. San Diego. Vol. 101, pp: 185-227.
41
Gisberta, E.; Rodrı´guezb, A.; Cardonac, L.; Huertasa, M.; Gallardod, M.A.;Sarasquetee, C.;Sala Rabanald, M.; Ibarzd, A.; Sa´nchezd, J. and Castello´-Orvayb, F., 2004. Recovery of Siberian sturgeon yearlings after an acute exposure to environmental nitrite: changes in the plasmatic ionic balance, Na+--K+ ATPase activity, and gill histology. Aquaculture. Vol. 239, pp: 141-154.
42
Goldes, S.A.; Ferguson, H.W.; Moccia, R.D. and Daoust, P.Y., 1988. Histological effects of the inert suspended clay kaolin on the gills of juvenile rainbow trout, Salmo gairdneri. Journal of Fish Diseases. Vol. 11, pp: 23-34.
43
Good, Ch.; Davidson, J.; Welsh, C.; Snekvik, K. and Summerfelt, S., 2010. The effects of carbon dioxide on performance and histopathology of rainbow trout Oncorhynchus mykiss in water recirculation aquaculture systems. Aquacultural Engineering. Vol. 42, pp: 51-56.
44
Habibi, E.; Kalbassi, M.R.; Hosseini, S.J. and Qasemi, S.A., 2013. Feasibility of Identification of Fall and Spring Migrating Caspian trout (Salmo trutta caspius) by Using AFLP Molecular Marker. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 13, pp: 241-248.
45
Hajirezaee, S.; Mojazi Amiri, B. and Mirvaghefi, A.R., 2010. Relationships Between the Chemical Properties of Seminal Fluid and the Sperm Motility Characteristics of Caspian Brown Trout, Salmo Trutta Caspius (A Critically Endangered Salmonid Fish). Research Journal of Fisheries and Hydrobiology. Vol. 5, No. 1, pp: 27-31.
46
Hao, L.; Chen, L.; Hao, J. and Zhong, M., 2013. Bioaccumuulation and sub-acute toxicity of zinc nanoparticles in juvenile carp (Cyprinus carpio): A comparative study with its bulk counterparts. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 91, pp: 52-60.
47
Heisler, N., 1993. Acid-base regulation in response to changes of the environment: characteristics and capacity. In Fish Ecophysiology. Edited by JC Rankin and FB Jensen. Chapman and Hall. New York. pp: 207-230.
48
Ibrahim, S.A., 2013. Effect of Water Quality Changes on Gills and Kidney Histology of Oreochromis niloticus Fish Inhabiting the Water of Rosetta Branch, River Nile, Egypt. World Applied Sciences Journal. Vol. 26, No. 4, pp: 438-448.
49
Jobling, M., 1995. Environmental biology of fishes. Chapman and Hall Fish and fisheries series. Vol. 16, pp: 1-35.
50
Karlsson-Norrgren, L.; Dickson, W.; Ljungberg, O. and Runn, P., 1986a. Acid water and aluminium exposure: gill lesions and alumunuium accumulation in farmed brown trout, Salmo trutta. Journal of Fish Diseases. Vol. 9, pp: 1-10.
51
Karlsson-Norrgren, L.; Björklund, I.; Ljungberg, O. and Runn, P., 1986b. Acid water and aluminium exposure: experimentally induced gill lesions in brown trout, Salmo trutta. Journal of Fish Diseases. Vol. 9, pp: 11-26.
52
Khaksary Mahabady, M.; Morovvati, H.; Arefi, A. and Karamifar, M., 2012. Anatomical and Histomorphological Study of Spleen and Pancreas in Berzem (Barbus pectoralis). World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 4, No. 3, pp: 263-267.
53
Korai, A.L.; Lashari, K.H.; Sahato, G.A. and Kazi, T.G., 2010. Histological Lesions in Gills of Feral Cyprinids, Related to the Uptake of Waterborne Toxicants from Keenjhar Lake. Reviews in Fisheries Science. Vol. 18, pp: 157-176.
54
Lee, C.S. and Donaldson, E., 2001. General discussion on Reproductive biotechnology in finfish aquaculture. Aquaculture. pp: 303-320.
55
Mallatt, J., 1985. Fish Gill Structural Changes Induced by Toxicants and Other Irritants: A Statistical Review. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 42, No. 4, pp: 630-648.
56
Mallya, Y.J., 2007. The effects of dissolved oxygen on fish growth in aquaculture. UNU-Fisheries Training Programme. Final Project. pp: 75-92.
57
Martinez, C.B.R.; Nagae, M.Y.; Zaia, C.T.B.V. and Zaia, D.A.M., 2004. Morphological and physiological acute effects of lead in the Neotropical fish Prochilodus lineatus. Brazilian Journal of Biology. Vol. 64, No. 4, pp: 797-807.
58
Matey, V.; Richards, J.G.; Wang, Y.; Wood, C.M.; Rogers, J.; Davies, R.; Murray, B.W.; Chen, X.Q.; Du, J. and Brauner, C.J., 2008. The effect of hypoxia on gill morphology and ionoregulatory status in the Lake Qinghai scaleless carp, Gymnocypris przewalskii. The Journal of Experimental Biology. Vol. 211, pp: 1063-1074.
59
Olson, K.R. and Fromm, P.O., 1973. Ascanning electron microscopic study of secondary lamellae and chloride cells of rainbow trout (Salmo gairdneri). Zeitschrift fur Zellforschung und mikroskopische Anatomie. Vol. 143, pp: 439-449.
60
Olson, K.R.; Fromm, P.O. and Frantz, W.L., 1973. Ultrastructural changes of rainbow trout gills exposed to methyl mercury or mercuric chloride. Federal Procedure. Vol. 32, 261 P. In The fish gill: site of action and model for toxic effects of environmentalpollutants. Edited by DH Evans. 1987. Environmental Health Perspectives. Vol. 71, pp: 47-58.
61
Olsvik, P.A.; Kristensen, T.; Waagbø, R.; Tollefsen, K.E.; Rosseland, B.O. and Toften, H., 2006. Effects of hypo- and hyperoxia on transcription levels of five stress genes and the glutathione system in liver of Atlantic cod Gadus morhua. The Journal of Experimental Biology. Vol. 209, pp: 2893-2901.
62
Pane, E.F.; Haque, A. and Wood, C.M., 2004. Mechanistic analysis of acute, Niinduced respiratory toxicity in the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): an exclusively branchial phenomenon. Aquatic Toxicology. Vol. 69, pp: 11-24.
63
Parker, T.M., 2013. Effects of the interaction of environmental factors (hypoxia and ammonia) on fish. Thesis for the Degree Master of Science. The Ohio State University. 72 P.
64
Pichavant, K.; Person-Le-Ruyet, J.; Le Bayon, N.; Severe, A.; Le Roux, A. and Boeuf, G., 2001. Comparative effects of long-term hypoxia on growth, feeding and oxygen consumption in juvenile turbot and European sea bass. Journal of Fish Biology. Vol. 59, No. 4, pp: 875-883.
65
Rafatnezhad, S. and Falahatkar, B., 2011. Nitrogenous compounds and oxygen concentration as the key density dependent factors to optimize growth of beluga, Huso huso (Actinopterygii: Acipenseriformes: Acipenseridae), in circular fiberglass tanks. Acta Ichthyologica, Piscaoriat. Vol. 41, No. 4, pp: 285-291.
66
Reiser, S.; Schroeder, J.P.; Wuertz, S.; Kloas, W.R. and Hanel, W., 2010. Histological and physiological alterations in juvenile turbot (Psetta maxima, L.) exposed to sublethal concentrations of ozone-produced oxidants in ozonated seawater. Aquaculture. Vol. 307, pp: 157-164.
67
Reiser, S.; Wuertz, S.; Schroeder, J.P.; Kloas, W.R. and Hanel, W., 2011. Risks of seawater ozonation in recirculation aquaculture, effects of oxidative stress on animal welfare of juvenile turbot (Psetta maxima). Aquatic Toxicology. Vol. 105, pp: 508-517.
68
Rodrigues, R.V.; Schwarz, M.H.; Delbos, B.C.; Carvalho, E.L.; Romano, L.A. and Sampaio, L.A., 2011. Acute exposure of juvenile cobia Rachycentron canadum to nitrate induces gill, esophageal and brain damage. Aquaculture. Vol. 3, pp: 223-226.
69
Rojik, I.; Nemcsok, J. and Boross, L., 1983. Morphological and biochemical studies on liver, kidney and gill of fishes affected by pesticides. Acta Biologica Hungarica. Vol. 34, No. 1, pp: 81-92.
70
Rosety Rodrigueiz, M.; Ordonez, F.J.; Rosety, M.; Rosety, J.M.; Ribelles, A. and Carrasco, C., 2002. Morphohisto-chemical changes in the gills of turbot, Scophthalmus maximus induced by sodium dodecyl sulfate. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 51, pp: 223-228.
71
Saber, T.H., 2011. Histological Adaptation to Thermal Changes in Gills of Common Carp Fishes Cyprinus carpio. Rafidain journal of science. Vol. 22, No. 1, pp: 46-55.
72
Salas-Leiton, E.; Cánovas-Conesa, B.; Zerolo, R.; López-Barea, J.; Cañavate, J.P. and Albama, J., 2009. Proteomics of juvenile Senegal sole (Solea senegalensis) affected by gas bubble disease in hyperoxygenated ponds. Journal of Marine Biotechnology. Vol. 11, pp: 473-487.
73
Schwaiger, J.; Ferling, H.; Mallow, U.; Wintermayr, H. and Negele, R.D., 2004. Toxic effects of the non steroidal anti-inflammatory drug diclofenac. Part I. Histopathological alterations and bioaccumulation in rainbow trout. Aquatic Toxicology. Vol. 68, No. 2, pp: 141-150.
74
Takabe, S.; Teranishi, K.; Takaki, S.; Kusakabe, M.; Hirose, S.; Kaneko, T. and Hyodo. S., 2012. Morphological and functional characterization of a novel Na+/K+-ATPase-immunoreactive, follicle-like structure on the gill septum of Japanese banded houndshark, Triakis scyllium. Cell and Tissue Research. Vol. 348, pp: 141-153.
75
Tao, S.; Li, H.; Li, C.S. and Lam, K.C., 2000. Fish uptake of inorganic and mucous complexes of lead. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 46, pp: 174-180.
76
Taylor, J.C. and Miller, J.M., 2001. Physiological performance of juvenile southern flounder, Paralychthys lethostigma (Jordan and Gilber 1884) in chronic and episodic hypoxia. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 258, pp: 195-214.
77
Terova, G.; Rimoldi, S.; Cora, S.; Bernardini, G.; Gornati, R. and Saroglia, M., 2008. Acute and chronic hypoxia affects HIF-1α mRNA levels in Sea bass (Dicentrarchus labrax). Aquaculture. Vol. 279, pp: 150-159.
78
Van der Meer, D.L.; van der Thillart, G.E.E.J.M.; Witte, F.; de Bakker, M.A.G.; Besser, J.; Richardson, M.K.; Spaink, H.P.; Leito, J.T.D. and Bagowski, C.P., 2005. Gene expression profiling of the long-term adaptive response to hypoxia in the gills of adult zebrafish. American Journal of Physiology. Vol. 289, pp: R1512-R1519.
79
Van Heerden, D.; Vosloo, A. and Nikinmaa, M., 2004. Effects of short-term copper exposure on gill structure, methallothionein and hypoxia-inducible factor-1á (HIF 1á) levels in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquatic Toxicology. Vol. 69, pp: 271-280.
80
Velkova-Jordanoska, L. and Kostoski, G., 2005. Histopathological analysis of liver in fish (Barbus meridionalis petenyi) in reservoi Trebenit. Natura Croatica. Vol. 14, No. 2, pp: 147-153.
81
Velmurugan, B.; Selvanayagama, M.; Cengiz, E.I. and Unlu, E., 2007. Histopathology of lambda-cyhalothrin on tissues (gill, kidney, liver and intestine) of Cirrhinus mrigala. Environmental Toxicology and Pharmacology. Vol. 24, pp: 286-291.
82
Wang, T.; Lefevre, S.; Huong, D.T.T.; Cong, N.V. and Bayley, M., 2009. Effects of hypoxia on growth and digestion. In Fish Physiology. Edited by J Richards.; CJ Braunerand AP Farrell. Vol. 27. Academic Press. San Diego. pp: 361-396.
83
Wang, P.; Lin, C.; Hwang, L.; Huang, C.; Lee, T. and Hwang, P., 2013. Differential responses in gills of euryhaline tilapia, Oreochromis mossambicus, to various hyperosmotic shocks. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 152, pp: 544-551.
84
Wells, R.M.G. and Weber, R.E., 1990. Short communication the spleen in hypoxic and exercised rainbow trout. Journal of Experimental Biology. Vol. 150, pp: 461-466.
85
Zaghloul, K.H.; Hanna, M.I. and Zaki, M.M., 2007. Assessment and control of nitrite toxicity in Clarias gariepinus. Egyptian Journal of Aquatic Biology and Fisheries. Vol. 11, No. 3, pp: 1047-1068.
86
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر غلظت های مختلف دی فرمات سدیم بر شاخص های بیوشیمیایی و آنتی اکسیدانی سرم در ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspius)
ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspius) یکی از 9 زیرگونه قزل آلای قهوه ای در جهان و از گونه های بومی ایران می باشد که در معرض خطر انقراض می باشد. هدف از این تحقیق بررسیاثر غلظت های مختلف اسیدی فایر دی فرمات سدیم بر روی شاخص های بیوشیمیایی و آنتی اکسیدانی سرم در ماهی آزاد دریای خزر بود. بدین منظور، تعداد 360 قطعه بچه ماهی آزاد دریای خزر با وزن حدود 0/05±13 گرم به مدت 60 روز با به کارگیری چهار جیره شامل سطوح صفر (شاهد)، 0/5، 1 و 1/5 درصد، از دی فرمات سدیم در 4 تیمار و 3 تکرار مورد بررسی قرار گرفتند. خونگیری از ماهیان در شروع آزمایش، روز 30 و پس از پایان دوره از قسمت ساقه دمی، انجام شد. در هر بار نمونه برداری بعد از خونگیری فعالیت آنزیم های کاتالاز، سوپراکسید دیسموتاز (SOD) و مالون دی آلدهید (MDA) و هم چنین میزان تری گلیسرید، کلسترول، لاکتات دی هیدروژناز LDH و گلوکز توسط روش های بیوشیمیایی تعیین شد. نتایج نشان داد که مقدار گلوکز در 30 روز ابتدایی آزمایش در همه تیمارها اختلاف معنی داری نسبت به گروه شاهد داشته است. مقدارکلسترول سرم خون در روز 30 در تیمار 0/5 درصد و در روز 60 در تیمار 1 درصد نسبت به گروه شاهد کاهش معنی داری داشته است. مقدار تری گلیسرید در تمام گروه ها به جز تیمار 1 درصد در انتهای دوره افزایش معنی داری نسبت به شروع آزمایش داشته است. هم چنین در تیمار 0/5 و 1/5 درصد در روز صفر و 30 با روز 60 اختلاف معنی داری مشاهده شد. میزان آنزیم LDH در روز 30 نمونه برداری، در تیمار 1 درصد کاهش معنی داری نسبت به گروه شاهد داشته است. در مورد میزان کاتالاز سرم در روز 60آزمایش اختلاف معنی داری میان تیمارهای اسیدی فایر با گروه شاهد مشاهده نشد. میزان SOD پس از 60 روز نسبت به گروه شاهد معنی دار نبوده است. میزان فعالیت مالون دی آلدهید در تیمار 1 درصد در روز 30 و 60 نمونه برداری و تیمار 1/5 درصد در روز 60، اختلاف معنی داری با گروه شاهد داشتند. نتایج این تحقیق نشان می دهد که تیمارهای اسیدی فایر به خصوص تیمار 1 و 1/5 درصد تاثیر معنی دار در فاکتور بیوشیمایی و دفاع آنتی اکسیدانی ماهی آزاد تا 30 روز اول از خود نشان داده اند اما در 30 روز دوم ازمایش نتایج برعکس بود.
http://www.aejournal.ir/article_117621_2bb5cdfd5404f15d9fb93e1bdf390303.pdf
2020-09-22
241
250
10.22034/aej.2020.117621
اسیدهای چرب کوتاه زنجیره
ماهی آزاد دریای خزر
دی فرمات سدیم
شاخص های بیوشیمیایی
آنزیم های آنتی اکسیدانی
حسین
مومنی
momeni_hossein_dvm@yahoo.com
1
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
مهرزاد
مصباح
mehrmesbah@yahoo.com
2
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
تکاور
محمدیان
t.mohammadian@scu.ac.ir
3
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد رضا
تابنده
m.tabandeh@scu.ac.ir
4
گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
محمد
خسروی
m.khosravi@yahoo.com
5
گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
Alexandratos, N. and Bruinsma, J., 2012. World agriculture towards 2030/2050: the 2012 revision. ESA Working paper FAO, Rome. pp: 4-98.
1
Arthur, R.I.; Lorenzen, K.; Homekingkeo, P.; Sidavong, K.; Sengvilaikham, B. and Garaway, C.J., 2010. Assessing impacts of introduced aquaculture species on native fish communities: Nile tilapia and major carps in SE Asian freshwaters. Aquaculture. Vol. 299, pp: 81-88.
2
Baruah, K.; Pal, A.K.; Sahu, N.P.; Debnath, D.; Yengkokpam, S.; Norouzitallab, P. and Sorgeloos, P., 2009. Dietary Crude Protein, Citric Acid and Microbial Phytase Interacts to Influence the Hemato‐Immunological Parameters of Rohu, Labeo Rohita, Juveniles. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 40, No. 6, pp: 824-831.
3
Baruah, K.; Sahu, N.P.; Pal, A.K.; Debnath, D.; Yengkokpam, S. and Mukherjee, S.C., 2007b. Interactions of dietary microbial phytase, citric acid and crude protein level on mineral utilization by rohu Labeo rohita (Hamilton), juveniles. World Aquaculture Society. Vol. 38, pp: 238-249.
4
Baruah, K.; Sahu, N.P.; Pal, A.K.; Jain, K.K.; Debnath, D. and Mukherjee, S.C., 2007a. Dietary microbial phytase and citric acid synergistically enhances nutrient digestibility and growth performance of Labeo rohita (Hamilton) juveniles at sub-optimal protein level. Aquaculture Research. Vol. 38, pp: 109-120.
5
Cabello, F.C., 2006. Heavy use of prophylactic antibiotics in aquaculture: a growing problem for human and animal health and for the environment. Environmental Microbiology. Vol. 8, pp: 1137-1144.
6
Canibe, N.; Steien, S.; Overland, M. and Jensen, B.B., 2001. Effect of K-diformate in starter diets on acidity, microbiota, and the amount of organic acids in the digestive tract of piglets, and on gastric alterations. Journal of Animal Science. Vol. 79, pp: 2123-2133.
7
Casewell, M.; Friis, C.; Marco, E.; McMullin, P. and Phillips, I., 2003. The European ban on growth-promoting antibiotics and emerging consequences for human and animal health. The Journal of Antimicrobial Chemotherapy. Vol. 52, No. 2, pp: 159-161.
8
Da Silva, B.C.; Vieira, F.D.N.; Mourino, J.L.P.; Ferreira, G.S. and Seiffert, W.Q., 2013. Salts of organic acids selection by multiple characteristics for marine shrimp nutrition. Aquaculture. Vol. 384-387, pp: 104-110.
9
Denev, S.; Staykov, Y.; Moutafchieva, R. and Beev, G., 2009. Microbial ecology of the gastrointestinal tract of fish and the potential application of probiotics and prebiotics in finfish aquaculture. International Aquatic Research. Vol. 1, pp: 1-29.
10
Djousse, L.; Hunt, S.C. and Arnett, D.K., 2003. Dietary linoleic acid is inversely associated with plasma triacylglycerol: the national heart, lung, and blood institute family heart study. The American journal of clinical nutrition. Vol. 78, pp: 1098-1102.
11
Eidelsburger, O., 1998. In recent advances in nutrition. Nottingham University press, Nottingham. pp: 93-106.
12
Ellman, G.L., 1959. Tissue sulfhydryl groups. Archives of Biochemistry and Biophysics.Vol. 82, pp: 70-77.
13
Fahimi, Z.; Cheraghi, J.; Pilehvarian, A.A.; Sayehmiri, K. and Khosravi, A., 2011. Effects of Alcea angulata root alcoholic extract on blood ipid of male rabbit. Scientific Journal of Ilam University of Medical Sciences. Vol. 20, No. 2, pp: 23-32.
14
Freitag, M., 2007. Organic acids and salts promote performance and health in animal husbandry. In: Luckstadt, C., editor. Acidifiers in Animal Nutrition – A Guide for Feed Preservation and Acidification to Promote Animal Performance. 1st ed, Nottingham University Press, Nottingham, UK. pp: 1-11.
15
Frisch, S. and Murray, S., 2002. The diversity and availability of Caulerpa species found in retail aquarium outlets in southern California, USA. Journal of Phycology. Vol. 38, pp: 1-11.
16
Gormaz, J.G.; Fry, J.P.; Erazo, M. and Love, D.C., 2014. Public health perspectives on aquaculture. Current Environmental Health Reports. Vol. 1, pp: 227-238.
17
Hassaan, M.S.; Wafa, M.A.; Soltan, M.A.; Goda, A.S. and Mogheth, N.M.A., 2014. Effect of dietary organic salts on growth, nutrient digestibility, mineral absorption and some biochemical indices of Nile tilapia; Oreochromis niloticus L. fingerlings. Oreochromis niloticus. pp.47-55.
18
Hayek, S.A.; Gyawali, R. and Ibrahim, S.A., 2013. Antimicrobial Natural Products. Microbial pathogens and strategies for combating them: science, technology and education. pp: 910-921.
19
Hossain, M.A.; Pandey, A. and Satoh, S., 2007. Effects of organic acids on growth and phosphorus utilization in red sea bream Pagrus major. Fisheries science. Vol. 73, pp: 1309-1317.
20
Johnson, A.M., 1999. Low levels of plasma proteins: malnutrition or inflammation? Clinical chemistry and laboratory medicine. Vol. 37, No. 2, pp: 91-96.
21
Kalantarian, S.H.; Mirzargar, S.S.; Rahmati-Holasoo, H.; Sadeghinezhad, J. and Mohammadian, T., 2019. Effects of oral administration of acidifier and probiotic on growth performance, digestive enzymes activities and intestinal histomorphology in Salmo trutta caspius (Kessler, 1877). Iranian Journal of Fisheries Sciences. DOI: 10.22092/ijfs.2019.119077.
22
Kalbasi, M.R.; Dorafshan, S.; Tavakolian, T.; Khazab, M. and Abdolhay, H., 2006. Karyological analysis of endangered Caspian salmon, Salmo trutta caspius. Aquaculture Research. Vol. 37, pp: 1341-1347.
23
Kav, K. and Erganis, O., 2008. Antibiotic fusceptibility of Lactococcus garvieae in rainbow trout (Oncorhyncus mykiss) Farms. Bulletin of the Veterinary Institute in Pulawy. Vol. 52, pp: 223-226.
24
Kavitha, K.; Reddy, A.G.; Reddy, K.K.; Kumar, C.S.; Boobalan, G. and Jayakanth, K., 2016. Hypoglycemic, hypolipidemic and antioxidant effects of pioglitazone, insulin and synbiotic in diabetic rats. Veterinary World. Vol. 9, No. 2, pp: 118-121.
25
Khajepour, F.; Hosseini, S.A. and MaHoseini, S., 2011. Studyon some hematological and biochemical parameters of juvenile beluga (Huso huso) fed citric acid supplemented diet. Global Veterinaria. Vol. 7, pp: 361-364.
26
Kim, Y.; Kil, D.; Oh, H. and Han, I.K., 2005. Acidifier as an alternative material to antibiotics in animal feed. Asian Australasian Journal of Animal Sciences. Vol. 18, pp: 1048.
27
Kocabaş, M. and Başçinar, N., 2013. The effect of salinity on spotting features of Salmo trutta abanticus, S. trutta fario and S. trutta labrax of cultured brown trout. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 12, No. 3, pp: 723-732.
28
Koroluk M.; Ivanova, L. and Maiorova, I., 1988. The method of definition of the activeness of catalase. Laboratorial work. pp: 16-19.
29
Kumar, P.; Jain, K.; Sardar, P.; Sahu, N. and Gupta, S., 2017. Dietary supplementation of acidifier: effect on growth performance and haemato-biochemical parameters in the diet of Cirrhinus mrigala juvenile. Aquaculture international. Vol. 25, pp:2101-2116.
30
Latha, M. and Pari, L., 2003. Preventive effects of Cassia auriculata L. flowers on brain lipid peroxidation in rats treated with streptozotocin. Molecular and Cellular Biochemistry. Vol. 243, pp: 23-28.
31
Lim, C.; Klesius, P.H.; Li, M.H. and Robinson, E.H., 2000. Interaction between dietary levels of iron and Vitamin C on growth, hematology, immune response and resistance of channel catfish (Ictalurus punctatus) to Edwardsiella ictaluri challenge. Aquaculture. Vol. 185, pp: 313-327.
32
Lim, C.; Klesius, P.H. and Lückstädt, C., 2010, May. Effects of dietary levels of potassium diformate on growth, feed utilization and resistance to Streptococcus iniae of Nile tilapia, Oreochromis niloticus. In 14th International Symposium on Fish Nutrition and Feeding. Qingdao, China. 472 p.
33
Liu, Y.G., 2001. Using organic acids to control salmonella in poultry production. Common wealth Veterinary Congress, October 10, pp: 1-4.
34
Luckstadt, C., 2008. The use of acidifiers in fish nutrition. Perspectives in Agriculture, Veterinary Science, Nutrition and Natural Resources. Vol. 3, No. 044, pp: 1-8.
35
Malone, L.J., 2000. Basic concepts of chemistry, 6th edition. Wiley Inter Science. 639 p.
36
Martínez-Álvarez, R.M.; Morales, A.E. and Sanz, A., 2005. Antioxidant defenses in fish: biotic and abiotic factors. Reviews in Fish Biology and fisheries. Vol. 15, No. 1-2, pp: 75-88.
37
Mikelsaar, M. and Zilmer, M., 2009. Lactobacillus fermentum ME-3–an antimicrobial and antioxidative probiotic. Microbial ecology in health and disease. Vol. 21, No. 1, pp: 1-27.
38
Mohammadian, T.; Alishahi, M.; Tabandeh, M.R.; Ghorbanpoor, M.; Gharibi, D.; Tollabi, M. and Rohanizade, S., 2016. Probiotic effects of Lactobacillus plantarum and L. delbrueckii ssp. bulguricus on some immune-related parameters in Barbus grypus. Aquaculture international. Vol. 24, No. 1, pp: 225-242.
39
Moss, D.W. and Henderson, A.R., 1999. Clinical enzymology. In: Burtis, C.A. and Ashwood, E.R., (Eds.), Tietz Textbook of Clinical Chemistry, third ed. W.B Saunders Company, Philadelphia. pp: 617-721.
40
Nakai, S.A. and Siebert, K.J., 2003. Validation of bacterial growth inhibition models based on molecular properties of organic acid. International Journal of Food Microbiology. Vol. 86, pp: 249-255.
41
Niksirat, H. and Abdoli, A., 2009. On the status of the critically endangered Caspian brown trout, Salmo trutta caspius, during recent decades in the southern Caspian Sea basin (Osteichthyes: Salmonidae). Zoology in the Middle East. Vol. 46, pp: 55-60.
42
Ng, W.K. and Koh, C.B., 2016. The utilization and mode of action of organic acids in the feeds of cultured aquatic animals. Reviews in Aquaculture. Vol. 0, pp: 1-27.
43
Ooi, L.G. and Liong, M.T., 2010. Cholesterol-lowering effects of probiotics and prebiotics: a review of in vivo and in vitro findings. International Journal ofMolecular Sciences. Vol. 11, pp: 2499-2522.
44
Owen, M.A.G.; Waines, P.; Bradley, G. and Davies, S., 2006. The effect of dietary supplementation of sodium butyrate on the growth and microflora of Clarias gariepinus (Burchell 1822). Abstract from the 12th International Symposium Fish Nutrition and Feeding. Vol. 147.
45
Pandey, A. and Satoh, S., 2008. Effects of organic acids on growth and phosphorus utilization in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fisheries science. Vol. 74, pp: 867-874.
46
Partanen, K.H. and Mroz, Z., 1999. Organic acids for performance enhancement in pig diets. Nutrition Research Reviews. Vol. 12, pp: 117-145.
47
Peixoto, F.P.; Carrola, J.; Coimbra, A.M.; Fernandes, C.; Teixeira, P.; Coelho, L.; Conceição, I.; Oliveira, M.M. and Fontainhas-Fernandes, A., 2013. Oxidative stress responses and histological hepatic alterations in barbel, Barbus bocagei, from Vizela River, Portugal. Revista Internacional de Contaminacion Ambiental. Vol. 29, No. 1, pp: 29-38.
48
Perez-Sanchez, T.; Balcazar, J.L.; Merrifield, D.; Carnevali, O.; Gioacchini, G. and Blas, I.D., 2011. Expression of immune-related genes in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) induced by probiotic bacteria during Lactococcus garvieae infection. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 31, pp: 196-201.
49
Raftari, M., 2009. Antibacterial activity of organic acids on the growth of selected bacteria in meat samples. Food Science and Technology. Malaysia: Universiti Putra Malaysia. 111 p.
50
Rahayu, W.P.; Astawan, M.; Wresdiyati, T. and Mariska, S., 2013. Antidiarrheal and antioxidative capability of synbiotic yogurt to the rats. International Food Research Journal. Vol. 20, No. 2.
51
Reda, R.M.; Mahmoud, R.; Selim, K.M. and El-Araby, I.E., 2016. Effects of dietary acidifiers on growth, hematology, immune response and disease resistance of Nile tilapia, Oreochromis niloticus. Fish and shellfish immunology. Vol. 50, pp: 255-262.
52
Rifai, N.; Bachorik, P.S. and Albers, J.J., 1999. Lipids, lipoproteins and apolipoproteins. Tietz textbook of clinical chemistry. 3rd ed. Philadelphia: WB Saunders Company. pp: 809-861.
53
Sacks, D.B., 1999. Carbohydrates. Burtis, C.A. and Ashwood, E.R., (Eds). Tietz Textbook of Clinical Chemistry. 3rd edition. Philadelphia: W.B Saunders Company. pp: 750-808.
54
Saei, M.M.; Beiranvand, K.; Taee, H.M. and Nekoubin, H., 2016. Effects of different levels of BioAcid Ultra on growth performance, survival, hematologichal and biochemical parameters of fingerlings rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture Research and development. Vol. 7, No. 455, pp: 2.
55
Saint-Paul, U., 2018. Native fish species boosting Brazilian’s aquaculture development. Acta of Fisheries and Aquatic Resources. Vol. 5, pp: 1-9.
56
Shen, W.Y.; Fu, L.L.; Li, W.F. and Zhu, Y.R., 2010. Effect of dietary supplementation with Bacillus subtilis on the growth, performance, immune response and antioxidant activities of the shrimp (Litopenaeus vannamei). Aquaculture Research. Vol. 41, No. 11, pp: 1691-1698.
57
Skinner, J.T. and Walder, P., 1991. Fumaric and propionic acids enhances performance of broiler chickens. Poultry Science. Vol. 70, pp: 1444-1447.
58
Skrivanova, E.; Marounek, M.; Benda, V. and Brezina, P., 2006. Susceptibility of Escherichia coli, Salmonella sp. and Clostridium perfringens to organic acids and monolaurin. Veterinarni Medicina. Vol. 3, pp: 81-88.
59
Sun, Y.Z.; Yang, H.L.; Ma, R.L. and Lin, W.Y., 2010. Probiotic applications of two dominant gut Bacillus strains with antagonistic activity improved the growth performance and immune responses of grouper Epinephelus coioides. Fish & shellfish immunology. Vol. 29, No. 5, pp: 803-809.
60
Wei, L.S.; Wee, W.; Siong, J.Y.F. and Syamsumir, D.F., 2011. Characterization of anticancer, antimicrobial, antioxidant properties and chemical compositions of Peperomia pellucida leaf extract. Acta Medica Iranica. pp: 670-674.
61
Weifen, L.; Xiaoping, Z.; Wenhui, S.; Bin, D.; Quan, L.; Luoqin, F.; Jiajia, Z. and Dongyou, Y., 2012. Effects of Bacillus preparations on immunity and antioxidant activities in grass carp (Ctenopharyngodon idellus). Fish physiology and biochemistry. Vol. 38, No. 6, pp: 1585-1592.
62
Xie, S.; Zhang, L. and Wand, D., 2003. Effects of several organic acids on the feeding behavior of Tilapia nilotica. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 19, pp: 255- 257.
63
Zhou, Z.; Liu, Y.; He, S.; Shi, P.; Gao, X.; Yao, B. and Ringo, E., 2009. Effects of dietary potassium diformate (KDF) on growth performance, feed conversion and intestinal bacterial community of hybrid tilapia (Oreochromis niloticus ♀×O. aureus ♂). Aquaculture. Vol. 291, pp: 89-94.
64
Zhu, Y.; Qiu, X.; Ding, Q.; Duan, M. and Wang, C., 2014. Combined effects of dietary phytase and organic acid on growth and phosphorus utilization of juvenile yellow catfish Pelteobagrus fulvidraco. Aquaculture. Vol. 430, pp: 1-8.
65
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر عوامل مختلف محیطی بر انتخاب زیستگاه توسط Salmo truttaدر رودخانه کرج
در بوم شناسی انتخاب زیستگاه عامل مهمی در پیش بینی توزیع و فراوانی گونه ها محسوب می شود. در خصوص ماهیان تعیین انتخاب زیستگاه به ویژه در مورد گونه های در معرض خطر، نادر، بومی یا دارای پراکنش منقطع و گونههای حساس به اثرات توسعه دارای اهمیت بوده و اقدام موثری در جهت حفاظت از تنوع زیستی ماهیان و برنامه ریزی برای کاربری اراضی محسوب می شود. ویژگی های زیستگاهی Salmo trutta در رودخانه کرج با تحلیل اثر متغیرهای عمق، سرعت جریان، عدد Froude، شاخص بستر، پناه بستر، پوشش دیداری، پوشش ترکیبی و مناطق استخری در 16 ایستگاه با جمع آوری داده ها طی سال های 1395 و 1396 با استفاده از نرم افزار HABSEL تعیین و محدوده های زیستگاه مورد استفاده و انتخاب شده این گونه با توجه به میزان دسترسی به هر متغیر مشخص شد. بر اساس نتایج، زیستگاه انتخابی خال قرمز در رودخانه کرج در عمق ۵۲-۴۶، سرعت جریان 0/45-0/40 متر بر ثانیه، عدد Froude 0/26-0/30، شاخص بستر 3/8-3/4، پناه بستر 20-10، پوشش دیداری 64-56، پوشش ترکیبی 21-17/5 و مناطق استخری 28-21 می باشد. در بین متغیرهای مورد بررسی در رودخانه کرج، شاخص عدد Froude، سرعت جریان و عوامل بستر بیش ترین مطلوبیت را برای Salmo trutta داشتند. با وجود فراهم بودن شرایط مطلوب در برخی نقاط رودخانه کرج جهت سکونت قزل آلای خال قرمز، به نظر می رسد عدم حضور این گونه در آن نقاط ناشی از اختلالات انسانی بر اکوسیستم های آب شیرین یا تغییرات اقلیمی بسیار شدید مانند سیل باشد.
http://www.aejournal.ir/article_117908_5658c14ee6ce93e3106294474e6054cb.pdf
2020-09-22
251
258
10.22034/aej.2020.117908
قزل آلای خال قرمز
شاخص انتخاب پذیری
متغیرهای محیطی
مطلوبیت زیستگاه
سید مهدی
مصطفوی
mehdimostafavi07@gmail.com
1
گروه علوم محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
محمدرضا
رحمانی
irandoe_rahmani@yahoo.com
2
گروه محیط زیست دریایی، دانشکده محیط زیست، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد
کابلی
mkaboli@ut.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
اصغر
عبدلی
asabdoli@yahoo.com
4
گروه تنوع زیستی و مدیریت اکوسیستم ها، پژوهشکده علوم محیطی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
AUTHOR
اردلان، م.؛ رحمانی، م.ر. و کاوه، ع.، 1387. بررسی تنوع مورفولوژیکی جمعیت های قزل آلای خال قرمز (Salmoniformes: Salmonidae: Salmo trutta) در سه حوضه آبریز دریاچه نمک، ارومیه و خزر. پانزدهمین کنفرانس سراسری و سومین کنفرانس بین المللی زیست شناسی ایران. دانشگاه تهران. صفحات 81 تا 82.
1
خراسانی، ن.، ۱۳۷۶. بررسی و مدیریت زیست محیطی منابع آب و خاک استان تهران. جلد اول، بررسی چگونگی مدیریت زیست محیطی منابع آبی رودخانه کرج. سازمان حفاظت محیط زیست.
2
رجبی نژاد، ر.؛ آذری تاکامی، ق.؛اسماعیلی ساری، ع. و نیکویان، ع.ر.، 1384. ارتباط بین تغذیه طبیعی ماهی قزل آلای خال قرمز (Salmo trutta fario) با تراکم زی توده کف زیان دریاچه سد لار. مجله بیولوژی دریا. سال 2، شماره 8، صفحات 37 تا 79.
3
صلواتیان، م.؛عباسی، ک.؛ آذری تاکامی، ق.؛ مرادی، م. و بختیاریآق مسجد، ش.، 1393. بررسی وضعیت رشد ماهی قزل آلای خال قرمز (Salmo trutta fario) در حوزه دریاچه سد لار. فصلنامه زیست شناسی جانوری دانشگاه آزاد اسلامی واحد دامغان. سال 7، شماره 2، صفحات 35 تا 48.
4
طباطبایی، س.ن.؛ ایگدری، س.؛ کابلی، م.؛ جوانشیر، ا. و هاشم زاده، ا.، ۱۳۹۲. بررسی فاکتورهای محیطی مؤثر در پراکنش سگ ماهی جویباری در رودخانه کردان. نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. شماره ۲، صفحات ۱۵۹ تا ۱۷۱.
5
عبدالله پور،ح.؛ صلواتیان، م.و. و عباسی، ک.، 1390. گزارش نهایی بررسی خصوصیات زیستی قزل آلای خال قرمز رودخانه های حوزه جنوبی دریای خزر (حویق، شفارود، تنکابن و لار). انتشارات دانشگاه آزاد اسلامی واحد تالش. 738 صفحه.
6
عبدلی، ا.، ۱۳۷۸. ماهیان آب های داخلی ایران. تهران. موزه طبیعت و حیات وحش دارآباد. ۳۷۸ صفحه.
7
کیوانی، ی.؛ نصری، م.؛ عباسی، ک. و عبدلی، ا.، ۱۳۹۵. اطلس ماهیان آب های داخلی ایران. جهاد دانشگاهی، واحد استان البرز (خوارزمی). ۲۱۸ صفحه.
8
Abdoli, A., 2000. The Inland Water Fishes of Iran. Tehran: Iranian Museum of Nature and Wildlife. pp: 377. (In Persian).
9
Agostinho, A.A.; Gomes, J.C. and Latini, J.D., 2004. Fisheries management in Brazilian reservoirs: lessons from/for South America. Interciencia. Vol. 29, pp: 334-338.
10
Ahmadi-Nedushan, B.; ST-Hilare, A.; Berube, M., Robichaud, E.; Thiemonge, N. and Bobeea B., 2006. A review of statistical methods for the evaluation of aquatic habitat suitability for instream flow assessment. River Research and Applications. Vol. 22, pp: 503-523.
11
Bain, M.B. and Bain, J.L., 1982. Habitat suitability index models: Coastal stocks of striped bass U.S. Fish and Wildlife Service. Office of biological services, Washington D.C. 29 p.
12
Baker, J.A. and Ross S.T., 1981. Spatial and temporal resource utilization by southeastern cyprinids. Copeia. Vol. 1981, No. 1, pp: 178-189.
13
Boets, P.; Gobeyn, S.; Dillen, A.; Poelman, E.; Goethals, P.L.M. and Bobeea B., 2018. Assessing the suitable habitat for reintroduction of brown trout (Salmo trutta forma fario) in a lowland river: A modeling approach. Ecology and Evaluation. Vol. 8, pp: 5191-5205.
14
Damalas, D.; Maravelias, C.D.; Katsanevakis, S.; Karageorgis, A.P. and Papaconstantinou, C., 2010. Seasonal abundance of non-commercial demersal fish in the easter Mediterranean Sea in relation to hydrographic and sediment characteristics. Vol. 89, No. 1, pp: 107-118.
15
De Kerckhove, D.T.; Smokokowski, K.E. and Randall, R.G., 2008. A primer on fish habitat models, Canadian Technical. Report of Fisheries؛and Aquatic Sciences. No. 2817, pp: 71.
16
Fazli, H.; Azari, H.; Moghim, M.; Kor, D.; Nabavi Jelodar, E. and Taleshian, H., 2011. Growth and mortality of brown trout, Salmo trutta fario in Lar dam, Iran. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 11, No. 1, pp: 37-47.
17
Ferreira, K.M., 2007. Biology and ecomorphology of stream fishes from the Rio Mogi-Guaçu basin, Southeastern Brazil. Neotropical Ichthyology. Vol. 5, No. 3, pp: 311-326.
18
Garland, R.D.; Tiffan, K.F.; Rondorf, D.W. and Clark, L.O., 2002. Comparison of subyearling fall Chinook salmon's use of riprap revetments and unaltered habitats in Lake Wallula of the Columbia River. North American Journal of Fisheries Management. Vol. 22, No. 4, pp: 1283-1289.
19
Gordon, N.D.; McMahon, T.A.; Finlayson, B.L.; Gippel, C.J. and Nathan, R.J., 2004. Stream Hydrology: An Introduction for ecologists, second ed. Wiley and Sons Inc.
20
Guay, J.C.; Boisclair, D.; Rioux, D.; Leclerc, M.; Lapointe, M. and Legendre, P., 2000. Development and validation of numerical habitat models for juveniles of Atlantic salmon (Salmo salar). Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 57, pp: 2065-2075.
21
Hariri, M.; Mirvaghefi, A.; Farahmand, H.; Taghavi, L. and Shahabinia, A., 2018. In situ assessment of Karaj River genotoxic impact with the alkaline comet assay and micronucleus test, on feral brown trout. Environmental Toxicology and Pharmacology. Vol. 58, pp: 59-69.
22
Hirzel, A.H.; Hausser, J.; Chessel, D. and Perrin, N., 2002.Ecological Niche Factor Analysis: How to compute habitat suitability maps without absent data? Ecology. Vol. 83, pp: 2027-2036.
23
Johnston,N.T.andSlaney,P.A.,1996. Fish habitat assessment procedures. Watershed restoration technical circular No. 8. University of British Columbia. 97 p.
24
Jowett, I.G. and Richardson, J., 2008. Habitat use by New Zealand fish and habitat suitability models. NIWA Science and Technology Series. No. 55, pp: 148.
25
Kiabi, B.H.; Abdoli, A. and Naderi, M., 1999. Status of the fish fauna in the South Caspian Basin of Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 18, pp: 57-65.
26
Marcus, M.D.; Hubert, W.A. and Anderson, S.H., 1984. Habitat suitability index models: Lake trout (exclusive of the Great lakes). U.S. Fish Wild. Serv. 12 p.
27
McCain, M.E., 1992. Comparison of Habitat Use and Availability for Juvenile Fall Chinook salmon in A Tributary of the Smith River, CA. Fish Habitat Relationship (FHR) Technical Bulletin. No. 7, pp: 1-9.
28
Morris, D.W., 2011. Adaptation and habitat selection in the eco-evolutionary process. Proc. R. Soc. B Biol, Sci. Vol. 278, pp: 2401-2411.
29
Morrison, M.L.; Marcot, B.G. and Mannan, R.W., 2006. Wildlife-habitat Relationships: Concepts and Applications third ed. Island Press. Washington. 250 p.
30
Oberdorff, T.; Pont, D.; Hugueny, B. and Chessel, D., 2001. A probabilistic model characterizing fish assemblages of French rivers: a framework for environmental assessment. Freshwater Biology. Vol. 46, No. 3, pp: 399-415.
31
Ostrand, K.G. and Wilde, G.R., 2002. Seasonal and spatial variation in a prairie stream-fish assemblage. Ecology of Freshwater Fish. Vol. 11, pp: 137-149.
32
Pearson, R.G., 2010. Species’ distribution modeling for conservation educators and practitioners. Lessons Conserve. Vol. 3, pp: 54-89.
33
Platts, W.S.; Megahan, W.F. and Minshall, G.W., 1983. Methods for Evaluating Stream, Riparian and Biotic Conditions. General Technical Report 138. US Department of Agriculture, Forest Service, Intermountain Forest and Range Experiment Station, Ogden. Available at: http://www.treesearch.fs.fed.us/pubs/29138.
34
Porter, M.S.; Rosenfeld, J. and Parkinson, E.A., 2000. Predictive models of fish species distribution in the Blackwater drainage, British Columbia. North American J of fisheries management. Vol. 20, No. 2, pp: 349-359.
35
Railsback, S.F.; Stauffer, H.B. and Harvey, B.C., 2003. What can habitat preference models tell us? Tests using a virtual trout population. Ecol, Appl. Vol. 13, pp: 1580-1594.
36
Rashleigh, B.; Barber, M.C.; Cyterski, M.; Johnston, J.; Pamar, R. and Mohamoud, Y., 2004. Population Models for Stream Fish Response to Habitat and Hydrologic Alteration: The Cvi watershed tool, Environmental protection Agency, office of research & development, Athens, GA, USA.
37
Rosenfeld, J., 2003. Assessing the habitat requirement of stream fishes: An overview and evaluation of different approaches. Transaction of the American Fisheries Society. Vol. 132, pp: 953-968.
38
Rosenfeld, J.S.; Leiter, T.; Lindner, G. and Rothman, L., 2005. Food abundance and fish density alters habitat selection, growth, and habitat suitability curves for juvenile coho salmon (Oncorhynchus kisutch). Can. J. Fish. Aquat, Sci. Vol. 62, pp: 1691-1701.
39
Voos, K.A.; Lifton, W.S. and Consultants, W.C., 1988. Development of a bivariate depth and velocity suitability function for Dolly Varden juveniles. In Proceedings of a workshop on the development and evaluation of habitat suitability criteria. Fort Collins, CO: US Fish and Wildlife Service Biological Report. Vol. 88, No. 11, pp: 307-319.
40
Waddle, T.J., 2012. PHABSIM for Windows user's manual and exercises: U.S. Geological survey open-file report. 288 p.
41
Wanat, J., 2002. Using habitat suitability models to identify essential fish habitat for the winter flounder pseudopleurone, University of New Hampshire, MSc Thesis.
42
Yu, S.L. and Lee, T.W., 2002. Habitat preference of the stream fish, Sinogastromyzon puliensis (Homalopteridae). Zoological Studies-Taipei. Vol. 41, No. 2, pp: 183-187.
43
Zippin, C., 1956. An evaluation of the removal method of estimating animal populations. Biometrics. Vol. 12, pp: 163-189.
44
ORIGINAL_ARTICLE
اثر جیره غذایی حاوی سطوح مختلف مخلوط اسانس های گیاهی (Mix oil) بر شاخص های رشد و بقاء ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) در مواجهه با باکتری یرسینیا روکری (Yersinia ruckeri)
این مطالعه به منظور ارزیابی تاثیر جیره حاوی سطوح مختلف مخلوط اسانس های گیاهی (Mixed oil) بر شاخص های رشد و میزان بازماندگی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) در مواجهه با باکتری Yersinia ruckeri صورت گرفت. چهار گروه از ماهیان با میانگین وزنی 0/10±31/0 گرم در حوضچه های سیمانی با تراکم 70 قطعه ماهی توزیع و طی مدت 8 هفته با خوراک حاوی سطوح مختلف Mix oil (صفر، 400ppm، 200ppm، 50ppm، هر تیمار با 3 تکرار) غذادهی شدند. در انتهای دوره شاخص های رشد، درصد بازماندگی و میزان مقاومت تیمارهای مختلف در مواجهه با باکتری محاسبه شد. نتایج نشان داد، که ماهیان تغذیه شده با غلظت های مختلف مخلوط اسانس به ویژه غلظت 400ppm آن، از شاخص های رشد بهتر (افزایش وزن بدن، نرخ رشد ویژه، میانگین رشد روزانه، نسبت کارایی پروتئین) و درصد بازماندگی بیشتری در مواجهه با باکتری یرسینیا روکری نسبت به سایر تیمارها برخوردار بودند (0/05>p). براساس نتایج حاصله، استفاده از مخلوط اسانس های گیاهی Mix oil به ویژه در سطح 400 ppm در جیره ماهی قزل آلای رنگین کمان، منجر به بهبود عملکرد رشد و افزایش مقاومت ماهیان قزل آلای رنگین کمان در مواجهه با باکتری یرسینیا روکری شده است.
http://www.aejournal.ir/article_117943_e694e41bd8aa1ca7974e34230f14ec26.pdf
2020-09-22
259
264
10.22034/aej.2020.117943
عملکرد رشد
بازماندگی
قزل آلای رنگین کمان
مخلوط اسانس گیاهی
یرسینیا روکری
علیرضا
باباعلیان امیری
alirezababaalian@gmail.com
1
گروه بهداشت دانشکده علوم دامپزشکی، واحد علوم تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
قباد
آذری تاکامی
takami85@hotmail.com
2
گروه بهداشت دانشکده علوم دامپزشکی، واحد علوم تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد
افشارنسب
mafsharnasab@yahoo.com
3
گروه بهداشت دانشکده علوم دامپزشکی، واحد علوم تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
اشکان
زرگر
azargar@ut.ac.ir
4
گروه بهداشت آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
اکبری، پ.؛ قرقانی پور، م. و فریدونی، م.س.، 1394. اثر عصاره آویشن شیرازی و پونه بر تغییرات فاگوسیتوز، لیزوزیم، انفجار تنفسی و گلبول های قرمز در ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 70، صفحات 447 تا 454.
1
پورغلام، ر.؛ شریف روحانی م.؛ صفری ر.؛ سعیدی، ع.؛ بینایی، م.؛ نجفیان، ر.؛ بانکه ساز، ز.؛ تقوی، م. و سپهداری، ا.، 1392. اثر عصاره سرخارگل (Echinacea purpurea) بر برخی شاخص های ایمنی و بازماندگی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) در برابر با استروپتوکوک اینیایی (Streptococcus iniae). مجله علمی شیلات ایران. دوره 22، صفحات 25 تا 32.
2
عادل، م.؛ پورغلام، ر.؛ ذریه زهرا، ج.؛ صفری، ر. و قیاسی، م.، 1394. اثر سطوح مختلف عصاره نعناع فلفلی (Mentha piperita) بر شاخص های رشد، ترکیبات لاشه، باکتری های روده و بازماندگی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) در مواجهه با باکتری یرسینیا روکری (Yersinia ruckeri). مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 70، صفحات 62 تا 70.
3
Akhlaghi, M. and Sharif Yazdi, H., 2008. Detection and identification of virulent Yersinia ruckeri the causative agent of enteric red mouth disease in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) cultured in Fars province, Iran. Iranian Journal of Veterinary Research Shiraz University. Vol. 9, pp: 347-352.
4
AOAC. 1995. Official Methods of Analysis, Association of Official Analytical Chemists International. 4nd edition. Arlington, VA, USA. 634 p.
5
AY, S.; Bilen, S.; Alak, G.; Hisar, O.; Yanık, T. and Biswas, G., 2015. Growth performance and antioxidant enzyme activities in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) juveniles fed diets supplemented with sage, mint and thyme oils. Fish physiology and biochemistry. Vol. 41, pp: 165-175.
6
Bagheri, T.; Hedayati, S.A.; Yavari, V.; Alizade, M. and Farzanfar, A., 2008. Growth, survival and gut microbial load of Rainbow trout (Onchorhynchus mykiss) fry given diet supplemented with probiotic during the two months of first feeding. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 8, pp: 43-48.
7
Dugenci, S.K.; Arda, N. and Candan, A., 2003. Some medicinal plants as immunostimulant for fish. Ethnopharmacology. Vol. 88, pp: 99-106.
8
Giannenas, I.; Triantafillou, E.; Stavrakakis, S.; Margaroni, M.; Mavridis, S.; Steiner. ad Karagouni, E., 2012. Assessment of dietary supplementation with carvacrol or thymol containing feed additives on performance, intestinal microbiota and antioxidant status of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 350-353, pp: 26-32.
9
Hadian, J.; Ghasemnezhad, M. and Ranjbar, H., 2008. Antifungal potency of some essential oils in control of postharvest decay of strawberry caused by Botrytis cinerea, Rhizopus stolonifer and Aspergillus niger. Journal of Essential Oil Research. Vol. 11, pp: 553-562.
10
Haghighi, M. and Sharif Rohani, M., 2013. The effects of powdered ginger (Zingiber officinale) on the haematological and immunological parameters of rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Journal of Medicinal Plant and Herbal Therapy Research. Vol. 1, pp: 8-12.
11
Hajibeglou, A. and Sudagar, M., 2010. Immune response of common carp (Cyprinus caprio) Fed with herbal immunostimulants diets. Agricultural Journal. Vol. 5, pp: 163-172.
12
Heidarieh, M.; Mirvaghefi, A.R.; Sepahi, A.; Sheikhzadeh, N.; Shahbazfar, A.A. and Akbari, M., 2012a. Effects of Dietary Aloe Vera on Growth Performance, Skin and Gastrointestine Morphology in Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss). Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 13, pp: 367-373.
13
Heidarieh, M.; Mirvaghefi, A.R.; Akbari, M.; Farahmand, H.; Sheikhzadeh, N. and Shahbazfar, A.A., 2012b. Effect of dietary Ergosan on growth performance, digestive enzymes, intestinal histology, hematological parameters and body composition of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 38, pp: 1169-1174.
14
Harikrishnan, R.; Nisha, M.R. and Balasundaram, C., 2003. Hematological and biochemical parameters in common carp, Cyprinus carpio, followingherbal treatment for Aeromonas hydrophila infection. Aquaculture. Vol. 221, pp: 41-50.
15
Gulec, A.K.; Danabas, D.; Ural, M.; Seker, E.; Arslan, A. and Serdar, O., 2013. Effect of mixed use of thyme and fennel oils on biochemical properties and electrolytes in rainbow trout as a response to Yersinia rucker iinfection. Acta Veterinaria Brunensis. Vol. 82, pp: 297-302.
16
Mahious, A.S.; Gatesoupe, F.J.; Hervi, M.; Metailler, R. and Ollevier, F., 2006. Effect of dietary inulin and oligosaccharides as prebiotics for weaning turbot, Psetta maxima. Aquacalture International. Vol. 14, pp: 219-229.
17
Navarrete, P.; Toledo, I.; Mardones, P.; Opazo, R.; Espejo, R. and Romero, J., 2010. Effect of Thymus vulgaris essential oil on intestinal bacterial microbiota of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum) and bacterial isolates. Aquaculture Research. Vol. 41, pp: 667-678.
18
Rao, Y.Y.; Das, B.K.; Iyotymayee, P. and Chakrabarti, R., 2006. Effect of Achyranthes aspera on the immunity and survival of Labeorohita infected with Aeromonas hydrophila. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 20, pp: 265-273.
19
Sheikhzadeh, N.; Nofouzi, K.; Delazar, A. and Khani Oushani, A., 2011. Immunomodulatory effects of decaffeinated green tea (Camellia sinensis) on the immune system of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 31, pp: 1268-1269.
20
Tacon, A.G., 1990. Standard methods for the nutrition and feeding of farmed fish and shrimp. 11nd edition. Feeding Methods. Agent Laboratories Press, Redmond, Taoka. 138 p.
21
Ultee, A.; Kets, E. and Smid, E., 1999. Mechanisms of action of carvacrol on the food-borne pathogen Bacillus cereus. Applied andEnvironmental Microbiology. Vol. 65, pp: 4606-4610.
22
Zorriehzahra, M.J.; Adel, M. and Torabi Delshad, S., 2017. Enteric redmouth disease: Past, present and future: A review. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 16, pp: 1135-1156.
23
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین روابط طولی و وزنی در جمعیت های مختلف مولدین نر و ماده قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) عاری از بیماری خاص(SPF) به منظور انتخاب اصلح
تحقیق حاضر با هدف مقایسه روابط طولی و وزنی مولدین، نر و ماده قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) عاری از بیماریخاص (SPF)در راستای انتخاب مولدین نر و ماده اصلح، به منظور عملیات تلاقی گری، بین جمعیت های مختلف، در مرکز تحقیقات شیلاتی ماهیان سردآبی- تنکابن، انجام گردید عملیات اجرایی پروژه مشتمل بر جمع آوری پیش مولدین از طریق انتخاب مراکز تکثیر و پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان (براساس تایید سازمان شیلات ایران سازمان و سازمان دامپزشکی کل کشور) در سطح استان های آذربایجان غربی، مازندران، کهگیلویه و بویراحمد و انتقال آن ها به مرکز فوق الذکر انجام شد. در مجموع، جمعیت های پیش مولدین قزل آلای رنگین کمان (در قالب هفت تیمار و سه تکرار به ازای هر تیمار) از طریق هفت مزرعه در سطح استان های فوق الذکر جمع آوری و با تراکم 10 کیلوگرم بر مترمربع در حوضچه های بتونی با رعایت اصول امنیت زیستی (Biosecurity) در سالن پرورش مرکز تحقیقات ماهیان سردآبی ذخیره سازی شدند. پیش مولدین جهت ردیابی صفت اقتصادی رشد علامت گذاری شده و در حین دوره پرورش عملیات زیست سنجی در مقاطع مختلف رشد به منظور سنجش ضرایب زیستی و محاسبه رابطه طول و وزن، پیش مولدین انجام شد. میزان غذادهی پیش مولدین سه ساله به میزان 3-2 درصد وزن ماهیان و در سه نوبت در روز انجام شد. درخصوص تغذیه پیش مولدین جمعیت های مختلف از غذای Skretting با پروتئین 40 تا 45 درصد استفاده شد در طول دوره پرورش کلیه پارامترهای فیزیکی و شیمیایی آب به منظور کنترل شرایط بهینه رشد مورد پایش و ارزیابی مستمر قرار گرفت هم چنین تعویض آب بین 6-4 دفعه در شبانه روز به منظور حفظ کیفیت فیزیکی و شیمیایی آب صورت پذیرفت. از آن جایی که پیش مولدین نر و ماده در شرایط یکسان محیطی قرار داشتند. لهذا میزان واریانس محیطی ناشی از تغییرات شرایط محیطی و هم چنین واریانس اثرات متقابل (Interaction) بین ژنتیک ومحیط به صفر نزول نمود. بدیهی است در این حالت، تفاوت های عملکردی رشد در بین جمعیت های مختلف ناشی از عمکرد واریانس ژنتیکی قلمداد می گردد. بررسی معادلات رشد حاکی از آن بوده که بالاترین میانگین ضریب b در جنس نر در مزرعه آقای معروفی به میزان 3/15 به دست آمده که نشان دهنده ایزومتریک بودن رشد جمعیت مذکور است. بالاترین ضریب b در جنس ماده در مزرعه آقای سرشار به میزان میانگین 3/2 به دست آمد. ایجاد یکنواختی در اندازه ماهیان در اثر انتخاب باعت کم شدن هتروزیگوسیتی می شود. اغلب برداشت ماهیان هم اندازه در انتهای دوره پرورش سودمند بوده و در نتیجه می توان ماهیان پرورشی را در بازه زمانی کوتاهی به بازار عرضه شوند میزان ضریب همبستگی طول و وزن در جنسهای نر به دست آمده است. بالاترین میانگین ضریب همبستگی R2 در جنس نر در مزرعه آقای معروفی به میزان میانگین 0/87 مشاهده شد و مزارع سرشار با میانگین های 0/86، قربانی 0/84، فخاری 0/84 و کهگیلویه 0/82 در مرتبه های بعدی قرار گرفت. براساس داده های مذکور انتخاب والدین برای تولید ماهی قز لآلای رنگین کمان عاری از بیماری خاص انجام شد تا از این طریق انتخاب بهترین مولدین سالم و شناسنامه دار برای ایجاد عملیات تلاقی گری میسر گردد.
http://www.aejournal.ir/article_118360_e1bf8e9bcccf3f3c31c5728959b8e3bd.pdf
2020-09-22
265
274
10.22034/aej.2020.118360
ماهی قزل آلای رنگین کمان
نر و ماده
ضرایب رشد
عاری از بیماری
منصور
شریفیان
sharif_23m@yahoo.com
1
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
شهرام
دادگر
shdadgar@yahoo.com
2
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
محمود
حافظیه
jhafezieh@yahoo.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
افشارنسب، م.؛ آیین جمشید، خ.؛ حاجیان، ب.؛ بحرایی، ع.؛ قایدنیا، ب.؛ متین فر، ع.؛ راستی، ص.؛ پذیر، خ.؛ رضوانی، س.؛ پورکاظمی، م.؛ عبدالحی، ح.؛ شریفپور، ع.؛ ذریه الزهر، ج. و شریف روحانی، م.، 1394. گزارش نهائی طرح کلان ملی- فناوری و نوآوری: کسب و انتقال دانش فنی برای تولید میگوی عاری از بیماری خاص و قطع وابستگی به محصولات خارجی. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 190 صفحه.
1
بساک کاهکش، ف.؛ نیکپی، م.؛ تمجیدی، م.؛ فرخیان، ف. و امیری، ف.، 1384. تعیین تراکم ماهی بنی (M. sharpeyi) در سیستم پرورش چندگونه ای. موسسه تحقیقات شیلات ایران، مرکز تحقیقات آبزی پروری جنوب کشور. 80 صفحه.
2
شریفیان،م.، 1373. پاسخ های هورمونی و القاء اوولاسیون تحت شرایط استرس در ماهی قزل آلای رنگین کمان Onchorynchus mykiss پایان نامه کارشناسی ارشد، گروه آموزشی علوم دریایی. دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال. 180 صفحه.
3
شریفیان، م.، 1394. مروری بر مبانی ایمنی زیستی در فعالیت های تکثیر و پرورش ماهیان سردآبی. مجله دام، طیور و آبزیان. سال 8، شماره 26، صفحات 5 تا 11.
4
شریفیان، م.؛ سپهداری، ا.؛ متین فر،ع.؛ یوسفی، ر.؛ دادگر، ش.؛ نجارلشگری، س.؛ طاول کتری، م.؛ یوسفی، س.؛ صادقی نژاد ماسوله، ا.؛ حافظیه، م.؛ صیادبورانی، م.؛ محمودمحسنی،م.؛محمدراست روان،م.؛حسین زاده صحافی، ه. و عبدالحی، ح.، 1397. مقایسه شاخص های رشد و بقاء در جمعیت های مختلف جهت بهگزینی مولدین قزل آلای رنگین کمان عاری از بیماری. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 60 صفحه.
5
شریفیان، م.؛ سپهداری، ا.؛ دادگر، ش.؛ محمودمحسنی، م.؛ پورکاظمی، م. و آژیر، م.ت.، 1398. مطالعات پرورش و به گزینی مولدین قزل آلای رنگین کمان عاری از بیماری. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 84 صفحه.
6
Abdollahi, D. and Gerami, M.H., 2013a. Length-weight relationship and condition factor of Carasobarbus luteus in Chelvar River. The First Iranian Conference of Ichthyology, Esfahan University of Technology, Esfahan, Iran. pp: 193-195. (in Persian)
7
Abdollahi, D. and Gerami, M.H., 2013b. Investigating of some Length-weight relationship of Paraschistura nielseni (Nalbant and Bianco, 1998) by using linear and multiple regression in Karun River. The First Iranian Conference of Ichthyology, Esfahan University of Technology, Esfahan, Iran. pp: 188-192. (in Persian)
8
Austreng, E., 1978. Digestibility determination in fish using chromic oxide marking and analysis of contents from different segments of the gastrointestinal tract. Aquaculture. Vol. 13, pp: 265-272.
9
Bagenal, T.B. and Tesch, F.W., 1978. Age and growth. In: Methods for assessment of fish production in fresh waters, 3rd edn. Begenal, T., (Ed.). IBP Handbook No. 3, Blackwell Science Publications, Oxford. pp: 101-136.
10
Bal, D.V. and Rao, K.V., 1984. Marine fisheries. Tata McGraw-Hill Publishing Company, New Delhi. pp: 51-73.
11
Bagenal, T.B., 1987. Methods for assessment of fish production in freshwater. 3rd edition. Blackwell Scientific Publication, XVT. 365 p.
12
Bertalanffy, L.V., 1938. A quantitative theory of organic growth (inquiries in growth laws II). Human Biology. Vol. 10, pp: 181-213.
13
Beverton, R.J.H. and Holt, S.H., 1957. On the Dynamics of Exploited Fish Populations. London: Ser. Vol. 2, pp: 533-558.
14
Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology, South Asian Publishers. 157 p.
15
Cada, G.F.; Loar, J.M. and Sale, M.J., 1987. Trans. Am. Fish. Soc. Vol. 116, pp: 692-702.
16
Carlander, K.D., 1950. Handbook of freshwater fishery biology. William C. Brown. Dubuque, Iowa.
17
Dulcic, J. and Kraljevic, M., 1996. Fisheries Research. Vol. 28, pp: 243-251.
18
FAO Biosecurity Toolkit. 2007. Food and agricultural organization of the United Nations Rome. www.fao.org/docrep/010/a1140e/a1140e00.HTM (accessed July22, 2015).
19
Foster, H.L., 1962. Establishment and operation of S.P.F. colonies. In The Problems of Laboratory Animal Disease. R.J.C. Harris, ed. Academic Press, New York. pp: 249-259.
20
Garcia, C.B.; Duarte, J.O.; Sandoval, N.; Schiller, D.V.; Melo, G. and Navajas, P., 1998. Length-weight relationships of demersal fishes from the Gulf of Salamanca, Colombia. Naga. Vol. 21, No. 3, pp: 30-32.
21
Ghanbarzadeh, M.; Soofiani, N.M.; Keivany, Y. and Taghavi-Motlagh, S.A., 2015. Use of otolith length and weight in age estimations of the kingsoldier bream, Argyrops spinifer, in the Persian Gulf. Iranian Journal of Ichthyology. Vol. 1, No. 1, pp: 1-6. (in Persian)
22
Hedric, P.W., 1998. Geneticc of population. Arizona State university. 553 p.
23
Hile, R., 1936. Age and growt of the cisco, Leucichthus arbedi (Lesuer), in lakes of the north eastern highlands, Wisconsin, U.S. Bureau of Fisheries Bulletin. Vol. 19, pp: 211-317.
24
King, M., 1995. Fisheries biology assessment and management. Fishing News Book. 340 p.
25
Luther, G., 1968. The food habits of Liza macrolepis (Smith) and Mugil cephalus Linnaeus (Mugilidae) Indian Journal of Fisheries. Vol. 10a, No. 2, pp: 642-666.
26
Mir, J.I.; Sarkar, U.K.; Dwivedi, A.K.; Gusain, O.P.; Pal, A. and Jena, J.K., 2012. European Journal of Biological Sciences. Vol. 4, pp: 126-135.
27
Morey, G.; Moranta, J.; Massutı, E.; Grau, A.; Linde, M.; Riera, F. and Morales-Nin, B., 2003. Weight-length relationships of littoral to lower slope fishes from the western Mediterranean. Fish. Res. Vol. 62, No. 1, pp: 89-96.
28
OIE (World Organisation for Animal Health). 2012. Aquatic animal health code. www.oie.int/international standard-setting/aquatic-code/access-online.
29
OIE (World Organisation for Animal Health). 2015. Aquatic animal health code. www.oie.int/international standard-setting/aquatic-code/access-online.
30
Okumus, I., 2002. Rainbow trout Brood Stocks Management and Seed Production in Turkey. Turkey Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 2, pp: 41-46.
31
Pauly, D.; S-Bartez, M.; Moreau, J. and Jarre-Teichmann, A., 1992. A new model accounting for seasonal cessation of growth in fishes. Australian Journal of Marine and Freshwater Research. Vol. 43, pp: 1151-1156.
32
Petrakis, G. and Stergiou, K.I., 1995. Weight-Length Relationships for 33 Fish Species in Greek Waters. Fisheries Research. Vol. 21, pp: 465-469.
33
Qasim, S.Z., 1973a. An appraisal of the studies on maturation and spawning in marine teleosts from the Indian waters. Indian Journal of Fisheries. Vol. 20, No. 1, pp: 166-181.
34
Rabe, F.W., 1967. Age and growth of rainbow trout in four a lpine lakes. Northwest Science. Vol. 4.1, No. 1, pp: 12-22.
35
Reimers, N.; Maciolek, J.A. and Pister, E.P., 1955. Limnological study of the lakes in Convict Creek Basin, Mono County, California. U.S. Fish and Wildlife Service. Fisheries Bull. Vol. 103, pp: 437-503.
36
Reimers, N., 1963: Body condition, water temperature, and overwinter survival of hatchery reared trout in Convict Creek, California. Trans. Am. Fish. Soc. Vol. 92, pp: 39-46.
37
Ricker, W.E., 1973. Linear regressions in fishery research. Journal of Fisheries Research Board of Canada. Vol. 30, pp: 409-434.
38
Ricker, W.E., 1975. Hand book of computations for biological statistics of fish populations. Bull. Fish. Res. Bd. Canada. Vol. 119, 300 p.
39
Sae-Lim, P.; Kause, A.; Mulder, H.A.; Martin, K.E.; Barfoot, A.J.; Parsons, J.E.; Davidson, J.; Rexroad, C.E.; van Arendonk, J.A.M. and Komen, H., 2012.Genotype by environment interaction of growth traits in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): a continental scale study. Journal of Animal Sciences. Vol. 91, pp: 5572-5581.
40
Sani, R.; Gupta, B.K.; Sarkar, U.K.; Pandey, A.; Dubey, V.K. and Lakra, W.S., 2010. Length–weight relationships of 14 Indian freshwater fish species from the Betwa (Yamuna River tributary) and Gomti (Ganga River tributary) rivers Journal of Applied Ichthyology. Vol. 26, pp: 456-459.
41
Sarkar, U.K.; Negi, R.S.; Deepak, P.K.; Lakra, W.S. and Paul, S.K. 2008. Biological parameters of the endangered fish Chitala chitala (Osteoglossiformes: Notopteridae) from some Indian rivers. Fish. Res. Vol. 90, pp: 170-177.
42
Sokal, R.R. and Rohlf, F.J., 1987. Introduction to Biostatistics. W.H. Freeman, New York, USA.
43
Sumbuloglu, K. and Sumbuloglu, V., 2000. Biyoistatistik. Hatipoglu Yayınları. Ankara. No. 53, 269 p.
44
Tacon, A.G.J., 1990. Standard method for nutritional and feeding of farmed fish and shrimp. Argent librations press. Redmond, Wash. Vol. 1, 117 p.
45
Stickney, R.R., 1972. Length-Weight Relationships for Several Fishes and Invertebrates in Georgia Coastal Waters with Condition Factors for Fish Species.Skidaway Institute of Oceanography Savannah, Georgia 31406.
46
Walster, C.I.; Pali´c, D. and Scarfe, A.D., 2011. Veterinary aquaculture biosecurity concepts manual version 1. Ames, IA: International Veterinary Aquaculture Biosecurity Consortium.
47
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر عصاره الکلی گیاه زنیان (Trachyspermum ammi L) بر عملکرد رشد، فراسنجه های خونی و ایمنی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
در این تحقیق تاثیر عصاره گیاه زنیان (Trachyspermum ammi L) بر شاخص های رشد و ایمنی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) مورد بررسی قرار گرفت. در این بررسی 600 قطعه ماهی قزل آلا با میانگین وزنی اولیه 7±58 با جیره های غذایی به ترتیب حاوی 0/5، 1/5 و 2/5 درصد عصاره زنیان و گروه شاهد با جیره فاقد عصاره تغذیه گردیدند. در پایان دوره، شاخص های رشد، خون شناسی و ایمنی براساس فرمول های استاندارد محاسبه و با استفاده از آزمون توکی آنالیز انجام گردید. در گروه ماهیانی که 2/5 درصد عصاره زنیان دریافت کرده بودند شاخص های رشد مانند افزایش وزن، نرخ رشد ویژه، وزن نهایی و شاخص وضعیت نسبت به گروه شاهد به طور معنی داری بالاتر به دست آمد (0/05>p ). براساس نتایج به دست آمده از پارامترهای خون شناسی، تیمار تغذیه شده با 2/5 درصد عصاره زنیان دارای بیش ترین میزان هماتوکریت و هموگلوبین بوده و اختلاف معنی داری با تیمار شاهد نشان داد (0/05>p ). در سایر پارامترهای خونی (گلبول های سفید، گلبول های قرمز، MCV، MCHC و MCH) اختلاف معنی داری بین تیمارهای آزمایشی و گروه شاهد مشاهده نشد (0/05<p ). تغذیه ماهیان با 2/5 درصد عصاره زنیان فعالیت لیزوزیم و کمپلمان را به طور معنی داری بهبود بخشید (0/05>p ). در سایر پارامترهای بیوشیمیایی خون (ایمونوگلوبولین، آلبومین و پروتئین کل) اختلاف معنی داری بین سطوح مختلف عصاره زنیان و گروه شاهد دیده نشد (0/05<p ). بنابراین می توان نتایج گرفت استفاده از عصاره گیاه زنیان در جیره غذایی ماهی قزل آلای رنگین کمان می تواند منجر به بهبود فاکتورهای رشد و برخی از پارامترهای ایمنی گردد.
http://www.aejournal.ir/article_118783_69948152b06da95af3a7b78cfde5333a.pdf
2020-09-22
275
282
10.22034/aej.2020.118783
عصاره زنیان
پارامترهای ایمنی
شاخصهای رشد
قزل آلای رنگین کمان
مهدی
نادری فارسانی
m.naderi@urmia.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
LEAD_AUTHOR
رضوانه
جنابی حق پرست
rezvanehjenabi@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
AUTHOR
علیرضا
افضلی کرد محله
lrz_afzali@yahoo.com
3
گروه بهداشت آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
AUTHOR
Abdel-Tawwab, M.I.; Adeshina, A.; Jenyo-Oni, E.K.; Ajani, B.O. and Emikpe, K., 2017. Growth, physiological, antioxidants, and immune response of African catfish, Clarias gariepinus (B.), to dietary clove basil, Ocimum gratissimum, leaf extract and its susceptibility to Listeria monocytogenes infection. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 78, pp: 346-354.
1
Adel, M.; Caipang, C.M.A. and Dawood, M.A., 2017. Immunological responses and disease resistance of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) juveniles following dietary administration of stinging nettle (Urtica dioica). Fish and Shellfish Immunology.Vol. 71, pp: 230-238.
2
Adel, M.; Pourgholam, R.; Zorriehzahra, J. and Ghiasi, M., 2016. Hemato–Immunological and biochemical parameters, skin antibacterial activity, and survival in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) following the diet supplemented with Mentha piperita against Yersinia ruckeri. Fish and Shellfish Immunology.Vol. 55, pp: 267-273.
3
Adel, M.A.; Amiri, A.; Zorriehzahra, J.; Nematolahi, A. and Esteban, M.Á., 2015. Effects of dietary peppermint (Mentha piperita) on growth performance, chemical body composition and hematological and immune parameters of fry Caspian white fish (Rutilus frisii kutum). Fish and shellfish immunology. Vol.45, pp: 841-847.
4
Amar, E.C.; Kiron, V.; Satoh, S.; Okamoto, N. and Watanabe, T., 2000. Effects of dietary β-carotene on the immune response of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Fisheries Science.Vol. 66, pp: 1068-1075.
5
Anderson, W.G.; McKinley, R.S. and Colavecchia, M., 1997. The use of clove oil as an anaesthetic for rainbow trout and its effects on swimming performance. North American Journal of Fisheries Management. Vol. 17, pp: 301-307.
6
Awad, E.; Awaad, A.S. and Esteban, M.A., 2015. Effects of dihydroquercetin obtained from deodar (Cedrus deodara) on immune status of gilthead seabream (Sparus aurata L.). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 43, pp: 43-50.
7
Awad, E. and Awaad, A., 2017. Role of medicinal plants on growth performance and immune status in fish. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 67, pp: 40-54.
8
Awad, E.; Austin, D. and Lyndon, A.R. , 2013. Effect of black cumin seed oil (Nigella sativa) and nettle extract (Quercetin) on enhancement of immunity in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Aquaculture.Vol. 388, pp: 193-197.
9
Baba, E.; Acar, Ü.; Yılmaz, S.; Zemheri, F. and Ergün, S., 2018. Dietary olive leaf (Olea europea L.) extract alters some immune gene expression levels and disease resistance to Yersinia ruckeri infection in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish and shellfish immunology. Vol. 79, pp: 28-33.
10
Bahi, A.; Guardiola, F.A.; Messina, C.; Mahdhi, A.; Cerezuela, R.; Santulli, A.; Bakhrouf, A. and Esteban, M.A., 2017. Effects of dietary administration of fenugreek seeds, alone or in combination with probiotics, on growth performance parameters, humoral immune response and gene expression of gilthead seabream (Sparus aurata L.). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 60, pp: 50-58.
11
Balbba, S.I.; Hilal, S.H. and Hoggag, M.R., 1973. Active constituents of Ammi majus fruit at differet stages. Acta Medica.Vol. 23, pp: 372-380.
12
Begnami, A.F.; Spindola, H.M.; Ruiz, A.L.; de Carvalho, J.E.; Groppo, F.C. and Rehder, V.L., 2018.Antinociceptive and anti-edema properties of the ethyl acetate fraction obtained from extracts of (Coriandrum sativum Linn. Leaves, Biomed. Pharmacother. Vol. 103, pp: 1617-1622.
13
Benfey, T.J. and Sutterlin, A.M., 1984. The haematology of triploid land locked Atlantic salmon, Salmo salar. Journal of Fish Biology. Vol. 24, pp: 333-338.
14
Bilen, S.; Altunoglu, Y.C.; Ulu, F. and Biswas, G., 2016. Innate immune and growth promoting responses to caper (Capparis spinosa) extract in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 57, pp: 206-212.
15
Citarasu, T.; Sivaram, V.; Immanuel, G.; Rout, N. and Murugan, V., 2006. Influence of selected Indian immunostimulat herbs against white spot syndrome virus (wssv) infection in black tiger shrimp, Penaeus monodon with reference to haematological, biochemical and immunological changes. Fish and shellfish immunology. Vol. 21, pp: 372-384.
16
Clerton, P.; Troutaud, D.; Verlhac, V.; Gabraudan, J. and Deschaux, P., 2001. Dietary vitamin Eand rainbow trout (Oncorhynchus mykiss)phagocyte functions: effect on gut and on headkidney leucocytes Fish and Shellfish Immunology. Vol. 11, pp: 1-13.
17
Dadras, H.; Hayatbakhsh, M.R.; Shelton, W.L. and Golpour, A., 2016. Effects of dietary administration of Rose hip and Safflower on growth performance, haematological, biochemical parameters and innate immune response of Beluga, Huso huso (Linnaeus, 1758). Fish and shellfish immunology. Vol. 59, pp: 109-114.
18
Davis, C.R.; Marty, G.D.; Adkison, M.A.; Freiberg, E.F. and Hedrick, R.P., 1999. Association of plasma IgM with body size, histopathologic changes, and plasma chemistries in adult Pacific herring Clupea pallasi. Journal of Diseases of Aquatic Organisms. Vol. 8, pp: 125-133.
19
Doan, H.V.; Hoseinifar, S.H.; Tapingkae, W.; Chitmanat, C. and Mekchay, S., 2017. Effects of Cordyceps militaris spent mushroom substrate on mucosal and serum immune parameters, disease resistance and growth performance of Nile tilapia, (Oreochromis niloticus). Fish and Shellfish Immunology.Vol. 67, pp: 78-85.
20
Ghasemi Pirbalouti, A; Pirali, E.; Pishkar, G.; Jalali, S.M.; Reyesi, M.; Jafarian Dehkordi, M. and Hamedi, B., 2011. The essential oils of some medicinal plants on the immune system and growth of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of herbal drugs. Vol. 2, pp: 149-155 (In Persian).
21
Goda, A.M.S., 2008. Effect of dietary Ginseng herb (Ginsana® G115) supplementation on growth, feed utilization, and hematological indices of Nile Tilapia, Oreochromis niloticus (L.), fingerlings. Journal of theWorld Aquaculture Society. Vol. 39, pp: 205-214.
22
Goldenfarb, P.; Bowyer, F.P.; Hall, E. and Brosious, E., 1971. Reproductibility in the hematology laboratory: The microhematocrite determination. Journal of Clinical Pathology. Vol. 56, pp: 35-39.
23
Guardiola, F.A.; Bahi, A.; Bakhrouf, A. and Esteban, M.A., 2017. Effects of dietary supplementation with fenugreek seeds, alone or in combination with probiotics, on gilthead seabream (Sparus aurata L.) skin mucosal immunity. Fish and Shellfish Immunology.Vol. 65, pp: 169-178.
24
Guardiola, F.A.; Bahi, A. and Esteban, M.A., 2018. Effects of dietary administration of fenugreek seeds on metabolic parameters and immune status of gilthead seabream (Sparus aurata L.). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 74, pp: 372-379.
25
Kaleo, I.V.; Gao, Q.; Liu, B.; Sun, C.; Zhou, Q.; Zhang, H. and Song, C., 2019. Effects of Moringa oleifera leaf extract on growth performance, physiological and immune response, and related immune gene expression of Macrobrachium rosenbergii with Vibrio anguillarum and ammonia stress. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 89, pp: 603-613.
26
Larsen, H.N., 1964.Comparison of various methods of hemoglobin detection of channel catfish blood. The Journal of Progressive Fish-Culturist. Vol. 26, pp: 11-15.
27
Leonard, J.B.K. and Cormick, S.D., 2005. Changes in haematology during up stream migration to American shad. Journal of Fish Biology. Vol. 54, pp: 1218-1230.
28
Li, M.; Zhu, X.; Tian, J.; Liu, M. and Wang, G., 2019. Dietary flavonoids from Allium mongolicum Regel promotes growth, improves immune, antioxidant status, immune related signaling molecules and disease resistance in juvenile northern Snakehead fish (Channa argus). Aquaculture. Vol. 501, pp: 473-481.
29
Mehrabi, Z.; Firouzbakhsh, F.; Rahimi-Mianji, G. and Paknejad, H., 2019. Immunostimulatory effect of Aloe vera (Aloe barbadensis) on non-specific immune response, immune gene expression, and experimental challenge with Saprolegnia parasitica in Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 503, pp: 330-338.
30
Moghanlou, K.S.; Isfahani, E.N.; Dorafshan, S.; Tukmechi, A. and Aramli, M.S., 2018. Effects of dietary supplementation with Stachys lavandulifolia Vahl extract on growth performance, hemato-biochemical and innate immunity parameters of Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Animal FeedScience Technology .Vol. 237, pp: 98-105.
31
Mooraki, N.; Dadgar, S. and Naderi, M., 2014. The effect of Parsley (Petroselinum sativum) on the growth and survival of Koi fish (Cyprinus carpio). Journal of Aquaculture Development. Vol. 8, pp: 63-72.
32
Msaada, K.; Jemia, M.B.; Salem, N.; Bachrouch, O.; Sriti, J.; Tammar, S.; Bettaieb, I.; Jabri, I.; Kefi, S.; Limam, F.; and Marzouk, B., 2017. Antioxidant activity of methanolic extracts from three Coriander (Coriandrum sativum L.) fruit varieties.Arabian Journal of Chemistry. Vol. 10, pp: 3176-3183.
33
Musthafa, M.S.; Asgari, S.M.; Kurian, A.; Elumalai, P.; Ali, A.R.J.; Paray, B.A. and Al-Sadoon, M.K., 2018. Protective efficacy of Mucuna pruriens (L.) seed meal enriched diet on growth performance, innate immunity, and disease resistance in Oreochromis mossambicus against Aeromonas hydrophila. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 75, pp: 374-380.
34
Prabu, D.L.; Chandrasekar, S.; Ambashankar, K.; Dayal, J.S.; Ebeneezar, S.; Ramachandran, K. and Vijayagopal, P., 2018. Effect of dietary Syzygium cumini leaf powder on growth and non-specific immunity of Litopenaeus vannamei (Boone 1931) and defense against virulent strain of Vibrio parahaemolyticus. Aquaculture. Vol. 489, pp: 9-20.
35
Rani, P. and Khullar, N., 2004. Antimicrobialevaluation of some medicinal plants for their antienteric potential against Multi-drug resistant Salmonella typhi. Phytotheraphy Research. Vol. 6, pp: 670-681.
36
Rezaei, M.H.; Sourinejad, I.; Soltanian, S. and Yousefzadi, M., 2013. The effects of dietary Zhumeria majdae extract on growth indices, hematology and immunology of catfish Pangasianodon hypophthalmus. Jurnal of Aquatic Ecology. Vol. 3, pp: 19-28 (In Persian).
37
Saeidi asl, M.R.; Adel, M.C.; Caipang, M.A. and Dawood, M.A.O., 2017. Immunological responses and disease resistance of Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) juveniles following dietary administration of Stinging nettle (Urtica dioica). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 71, pp: 230-238.
38
Singh, G.; Kapoor, I.P.S.; Pandey, S.K. and Singh, U.K., 2005. water Studies on essential oils: Part 10; Antibacterial activity of volatile oils from some species, Phytotherapy Research. Vol. 16, pp: 680-682.
39
Tan, X.; Sun, Z.; Huang, Z.; Zhou, C.; Lin, H.; Tan, L.P. and Xun, Q., 2017a. Huang, Effects of dietary hawthorn extract on growth performance, immune responses, growth and immune-related genes expression of juvenile golden Pompano (Trachinotus ovatus) and its susceptibility to Vibrio harveyi infection. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 70, pp: 656-664.
40
Tukmechi, A.; Rahmati Andani, H.R.; Manaffar, R. and Sheikhzadeh, N., 2011. Dietary administration of beta mercapto-ethanol treated Saccharomyces cerevisiae enhanced the growth, innate immune response and disease resistance of the Rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 30, pp: 923-928.
41
Vallejos-Vidal, E.; Reyes-López, F.; Teles, M. and MacKenzie, S., 2016. The response of fish to immunostimulant diets. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 56, pp: 34-69.
42
Wang, W.; Sun, J.; Liu, C. and Xue, Z., 2017. Application of immunostimulants in aquaculture: current knowledge and future perspectives. Aquaculture Research. Vol. 48, pp: 1-23.
43
Windisch, W.; Schedle, K.; Plitzner, C. and Kroismayr, A., 2008. Use of phytogenic product as feed additives for swine and poultry. Journal of Animal Science. Vol. 86, pp: 140-148.
44
Xue, M.; Leo, L.; Wu, X.; Ren, Z.; Gao, P. and Yu, Y., 2006. Effect of six alternative lipid sources on growth and tissue fatty acid composition in Japanese sea bass (Lateolobrax japonicus). Aquaculture. Vol. 260, pp: 206-214.
45
Yousefi, M.; Hoseini, S.M.; Vatnikov, Y.A.; Kulikov, E.V. and Drukovsky, S.G., 2019. Rosemary leaf powder improved growth performance, immune and antioxidant parameters, and crowding stress responses in Common carp (Cyprinus carpio) fingerlings. Aquaculture. Vol. 550, pp: 473-480.
46
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تأثیر اسانس آویشن شیرازی (Zataria multiflora Boiss) و پودر زنجبیل (Zingiber officinale) به صورت مجزا بر شاخص های رشد، ایمنی و مقاومت بچه ماهیان قزل آلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss) در مواجه با باکتری یرسینیا راکری (Yersinia ruckeri)
در مطالعه حاضر تأثیر اسانس آویشن شیرازی و پودر زنجبیل بر شاخص های رشد و تحریک سیستم ایمنی بچه ماهیان قزل آلای رنگین کمان مورد بررسی قرار گرفت. تعداد 150 قطعه بچه ماهی قزل آلای رنگین کمان با میانگین وزنی 1/49±31/40 گرم در 3 تیمار آزمایشی هرکدام با 3 تکرار (در هر تکرار 10 قطعه بچه ماهی) تقسیم شدند. تیمارها به مدت 30 روز با جیره های حاوی 0 (شاهد) و 1% اسانس آویشن و پودر زنجبیل تغذیه شدند. در روز 30 ام، باکتری یرسینیا راکری به صورت درون صفاقی به 15 قطعه از بچه ماهیان در هر تیمار به طور تصادفی تزریق شد. میزان تلفات روزانه به مدت 2 هفته ثبت گردید. در انتهای دوره نمونه خون از تیمارها تهیه شد. براساس نتایج به دست آمده شاخص های رشد اختلاف معنی داری بین تیمارهای آزمایشی نشان نداد (0/05<p ). در پایان دوره غذادهی بیش ترین مقدار پروتئین کل، آلبومین، گلوکز، لیزوزیم، کاتالاز، سوپراکسید دیسموتاز و فعالیت همولیتیک کمپلمان سرم در گروه شاهد ثبت گردید (0/05>p ). در فاز دوم ازمایش و در شرایط بعد از مواجه با عامل بیماری زا، بیش ترین مقدار گلوکز، لیزوزیم، کاتالاز، سوپراکسید دیسموتاز و فعالیت همولیتیک کمپلمان سرم در تیمار تغذیه شده از پودر زنجبیل به دست آمد (0/05>p ). بیش ترین مدت زمان زنده مانی بچه ماهیان پس از تزریق باکتری نیز در تیمار تغذیه شده از پودر زنجبیل ثبت شد. در مجموع نتایج این تحقیق نشان داد که استفاده از 1% پودر زنجبیل و اسانس آویشن باعث تحریک سیستم ایمنی و افزایش مقاومت بچه ماهیان قزل آلای رنگین کمان در برابر عوامل بیماری زا می گردد.
http://www.aejournal.ir/article_118832_6d11e7f7b9e121088c10150c65e630e5.pdf
2020-09-22
283
292
10.22034/aej.2020.118832
قزل آلای رنگینکمان
آویشن شیرازی
زنجبیل
یرسینیا راکری
عارف
زارعی نوذری
arefzareinozari72@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه گنبدکاوس، گنبدکاوس، ایران
LEAD_AUTHOR
حسنا
قلی پور کنعانی
gholipourk@gonbad.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه گنبدکاوس، گنبدکاوس، ایران
AUTHOR
حجت الله
جعفریان
hojat.jafaryan@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه گنبدکاوس، گنبدکاوس، ایران
AUTHOR
محمد
هرسیج
m_harsij80@gonbad.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه گنبدکاوس، گنبدکاوس، ایران
AUTHOR
ایزدی، ز.؛ اثنی عشری، م.؛ احمدوند، گ.؛ داودی، پ. و پیری، خ.، 1388. شناسایی ترکیب های شیمیایی و بررسی اثر ضدباکتریایی ابسانس گیاه نعناع فلفلی بر تعدادی از سویه های میکروبی. مجله ارمغان دانش. دوره 14، شماره 3، صفحات 45 تا 54.
1
ایمانی، م.، 1392. تأثیر گیاهان داروئی سیر (Allium sativa L.) و سرخارگل (Echinacea purpurea) بر شاخص های رشد، پارامترهای خونی و مقاومت در برابر آلودگی باکتریایی در ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss W.). پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه ارومیه.
2
سپیدنامه، م.، 1394. مقایسه استفاده خوراکی از آویشن شیرازی (Zataria multiflora Boiss) و ویتامین E بر کپورمعمولی (Cyprinus carpio L.) در مواجه با کادمیوم. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه صنعتی خاتمالانبیاء (ص) بهبهان.
3
سلطانی، م.؛ ظریف منش، ط. و ذریه زهرا، س.ج.، 1391. مطالعه تأثیر آویشن شیرازی (Zataria multiflora) بر میزان فعالیت سیستم عامل مکمل و لیزوزیم خون قزل آلای رنگین کمان (Onchorhynchus mykiss). دوره 21، شماره 4، صفحات 13 تا 22.
4
شریفی، ا.؛ نقش، ن. و رزمی، ن.، 1394. بررسی تأثیرات آنتی اکسیدانی چای سبز (Camellia sinesis) در موش های نر (Albino) مسموم شده با تیواستامید. مجله طب پیشگیری طبری. دوره 1، شماره 1، صفحات 19 تا 28.
5
شیخ الاسلامی امیری، م.؛ یوسفیان، م.؛ یاوری، و.؛ صفری، ر. و قیاسی، م.، 1390. بررسی تاثیر پریبیوتیک اینولین بر فاکتورهای سیستم ایمنی و مقاومت ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss Walbaum, 1972) در برابر باکتری بیماری زای استرپتوکوک. مجله زیست شناسی ایران. دوره 24، شماره 2، صفحات 303 تا 312.
6
صادقیان، م.س.، 1394. ارزیابی مقایسه ای اثر خوراکی گیاه آویشن شیرازی (Zataria multiflora Boiss) و ویتامین E بر بهبود عملکرد سیستم فیزیولوژیک بچه ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio L.). پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه صنعتی خاتمالانبیاء (ص) بهبهان.
7
علیشاهی، م.؛ سلطانی، م.؛ مصباح، م. و زرگر، ا.، 1391. اثر تحریک ایمنی و رشد لوامیزول، آرگوسان و سه عصاره گیاهی در ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 67، شماره 2، صفحات 135 تا 142.
8
علیشاهی، م.؛ قربانپور، م.؛ مصباح، م. و پیغان، ر.، 1388. بررسی اثر عصاره گیاه دارواش بر عیار پادتن ضد باکتری آئروموناس ماهی کپور معمولی، همایش علمی توسعه صنعت گیاهان دارویی ایران.
9
فتحی، م. و تنها، ت.، 1390. وضعیت فعالیت آنتی اکسیدانی و نارسایی قلبی در جوجه های مبتلا به سندروم افزایش فشارخون ریوی. مجله زیست شناسی جانوری تجربی. دوره 1، شماره 1، صفحات 69 تا 80.
10
کیخسروی، ع.؛ عتباتی، آ.؛ وطن دوست، ج.؛ شمس، ه.؛ جلیلی، م. و روکی، ح.، 1389. تأثیر غلظت های نزدیک به کشنده کادمیوم بر روی برخی پارامترهای بیوشیمیایی در خون ماهی فیتوفاگ (Hypophthalmichthys molitrix). مجله اقیانوس شناسی. دوره 1، شماره 2، صفحات 11 تا 16.
11
کارگرجهرمی، م.، 1391. ارزیابی اثرات تغذیه با اسانس های گیاهی بر رشد، ایمنی و مقاومت در برابر تنش کمبود اکسیژن و دمایی در ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه ارومیه.
12
کاولی حقیقی، م. و تولیت، ط.، 1380. زنجبیل (Zingiberofficinale Roscoe) و درمان های غیرمتعارف. فصلنامه گیاهان داروئی. شماره 1، صفحات 19 تا 28.
13
محمدی، م.ج.؛ علیشاهی، م. و آرمون، ا.، 1395. تأثیر عصاره دانه گیاه اسفرزه (Plantago ovata) بر فاکتورهای ایمنی غیراختصاصی بچه ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). مجله دامپزشکی در پژوهش و سازندگی. شماره 115، صفحات 97 تا 105.
14
مهاجری، د. و دوستار، ی.، 1390. اثر حفاظتی عصاره الکلی کلاله زعفران در مقابل سمیت، کبدی سیسپلاتین در موش صحرایی. مجله علوم پزشکی دانشگاه آزاد اسلامی. دوره 21، شماره 4، صفحات 251 تا 261.
15
نوبهار، ز.، 1392. بررسی تأثیر گیاهان دارویی زنجبیل، سیر و گزنه بر برخی فاکتورهای خونی و پاسخهای استرسی در فیل ماهی (Huso huso). پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه گنبدکاووس.
16
Afzal, M.; Al-Hadidi Menon, M.; Pesek, J. and Dhami, M.S., 2001. Zinger: an ethnomedical, chemical and pharmacological review. Drug Metabolism. Drug Interact. Vol. 18, pp: 159-190.
17
Agarwa, M.; Walia, S.; Dhingra, S. and Khambay, B.P.S., 2001. Insect growth inhibition, antifeedant and antifungal activity of compounds isolated/derived from Zingiber of cinale roscoe (ginger) rhizomes. Pest Management Science. Vol. 57, pp: 289-300.
18
Ahmadi, K.; Mirvaghefei, A.R.; Banaee, M. and Vosoghei, AR., 2014. Effects of long term diazinon exposure on some immunological and haematological parameters in rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Toxicology and Environmental Health Sciences. Vol. 6, Vo. 1, pp: 1-7.
19
Ahmed, R.S. and Sharma S.B., 1997. Biochemical studies on combined effects of garlic Allium sativum (Linn.) and ginger Zingiber officinale (Rose) in albino rats. Indian Journal Exp Biology. Vol. 35, pp: 841-843.
20
Albadr, N.A., 2011. Effect of thyme powder, extract and oil on carbon tetrachloride-induced liver injury. Journal of American Science. Vol. 7, No. 3, pp: 221-227.
21
Alishahi, M.; Ranjbar, M.M.; Ghorbanpour, M.; Peyghan, R.; Mesbah, M. and Razi Jalali, M., 2010. Effects of dietary Aloe vera on some specific and nonspecific immunity in the Common carp (Cyprinus carpio). International Journal of Veterinary Research. Vol. 4, No. 3, pp: 189-195.
22
Amar, E.C.; Kitron, V.; Satoh, S.; Okamoto, N. and Watanabe, T., 2000. Effect of dietary β-carotene on immune response of rainbow trout(Oncorhynchus mykiss). Fisheries Science. Vol. 66, pp: 1068-1075.
23
AOAC. 1995. Official Methods of Analysis of AOAC, Vol.1,15th edn. Association of Official Analytical Chemists, Arlington, VA, USA.
24
Borges, A.; Scotti, L.V.; Siqueira, D.R.; Jurinitz, D.F. and Wassermann, G.F., 2004. Hematologic and serum biochemical values for jundia´ (Rhamdia quelen). Fish Physiology and Biochemical. Vol. 30, pp: 21-25.
25
Citarasu, T., 2010.Herbal biomedicines a new opportunity for aquaculture industry. Aquaculture International. Vol. 18, No. 3, pp: 403-414.
26
Demers, N.E., 1993. The acute effects of stress on plasma proteins of Rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. The thesis for the degree of Master of Science. Oregon State University. 73 p.
27
Densmore, C.L.; Blazer, V.S.; Waldrop, T.B. and Pooler, P.S., 2001. Effects of Whirling Disease on Selected Hematological Parameters in Rainbow Trou. Journal of Wildlife Diseases. Vol. 37, pp: 375-378.
28
Dongmeza, E.; Siddhuraju, P.; Francis, G. and Becker, K., 2006. Effects of dehydrated methanol extracts of moringa (Moringa oleifera Lam.) leaves and three of its fractions on growth performance and feed nutrient assimilation in Nile tilapia (Oreochromis niloticus L.). Aquaculture. Vol. 261, pp: 407-422 (UK).
29
Dügenci, K.S.; Arda, N. and Candan, A., 2003. Some medicinal plants as immunostimulant for fish. Journal of Ethnopharmacology. Vol. 88, pp: 99-106.
30
Ellis, A.E., 1990. Techniques in fish immunology. In Lysozyme Assays. (Eds: Stolen, J.S.; Fletcher, T.C.; Anderson, D.P.; Robertson, B.S. and Van Muiswinkle, W.B.,). SOS Publications, Fair Haven. pp: 101-103.
31
EL-Nekeety, A.A.; Mohamed,S.R.; Hathout, A.S.; Hassan, N.S.; Aly, S.E. and Abdel-Wahhab, M.A., 2011. Antioxidant properties of Thymus vulgaris oil against aflatoxin-induce oxidative stress in male rats. Toxicology. Vol. 57, pp: 984-991.
32
Ernst, E. and Pittler M.H., 2000. Efficacy of ginger for nausea and vomiting: a systematic review of randomized clinical trials. British Journal of Anaesthesia. Vol. 84, pp: 367-371.
33
Feldman, B.F.; Zinkl, J.G. and Jian, N.C., 2000. Schalm’s veterinary hematology. Lippincott Williams and Wilkins publication, Canada. pp: 1120-1125.
34
Ghasemi Pirbaluti, A.; Pirali, A.; Pishkar, Gh. R.; Jalali, S.M.A.; Raesi, M.; Jafarian dehkordi, M. and Hamedi, B., 2010. The essential oils of some medicinal plants on the immune system and growth of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Herbal Drugs. Vol. 2, pp: 149-155.
35
Goth, L., 1991. A simple method for determination of serum catalase activity and revision of reference range. International Journal of Clinical Chemistry. Vol. 196, pp: 143-152.
36
Grzanna R.; Lindmark, L. and Frondoza, C.G. 2005. Ginger-anherbal Medicinal Product with Broad Anti Inflammatory Actions. Journal Medicinal of Food. Vol. 8, pp: 125-130.
37
Gulec, A.K.; Danabas, D.; Ural, M.; Seker, E.; Arsalan, A. and Serdar, O., 2013. Effect of mixed use of thyme and fennel oils on biochemical properties and electrolytes in rainbow trout as a response to Yersinia ruckeri infection. Acta Veterinaria Brno. Vol. 82, pp: 297-302.
38
Haghighi, M. and Sharif Rohani, M., 2013. The effects of powdered ginger (Zingiberofficinale) on the haematological and immunological parameters of rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Journal of Medicinal Plant and Herbal Therapy Research. Vol. 1, pp: 8-12.
39
Hamzawy, M.A.; El-Denshary, E.S.M.; Hassan, N.S.; Manaa, F. and Abdel-Wahhab, M.A., 2012. Antioxidant and Hepatorenoprotective Effects of Thyme vulgaris Extract in Rats during Aflatoxicosis, Global Journal of Pharmacology. Vol. 6, No. 2, pp: 106-117.
40
Jian, J. and Wu, Z., 2002. Effect of Chinese herbal medicine on non-specific immunity of Jian common carp (Cyprinus carpio var. Jian). Journal of Dalian Fisheries University. Vol. 17, pp: 114-119.
41
Lee, D.H.; Ra, C.S.; Song, Y.H.; Sung,K.I. and Kim, J.D., 2012. Effects of Dietary Garlic Extract on Growth, FeedUtilization and Whole Body Composition of Juvenile Sterlet Sturgeon (Acipenser ruthenus). Asian Australas. Journal of Animal Science. Vol. 25, pp: 577-583.
42
Luo, G.; Xu, J.; Teng, Y.; Ding, C. and Yan, B., 2010. Effects of dietary lipid levels on the growth, digestive enzyme, feed utilization and fatty acid composition of Japanese sea bass (Lateolabrax japonicus) reared in freshwater. Aquaculture Research. Vol. 41, pp: 210-219.
43
Maleknezhad, H.; Bazargani Gilani, B.; Tukmechi, A. and Ebrahimi H., 2012. A cytotoxicity and comparative antibacterial study on the effect of Zatariamultiflora Boiss, Trachy spermumcopticum essential oils, and Enrofloxacin on Aeromonashydrophila. Avicenna Journal of Phytomedicine. Vol. 2, No. 4, pp: 188-195.
44
Nya, E.J. and Austin, B., 2009. Use of garlic, Allium sativum, to control Aeromonas hydrophila infection in Rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Journal of fish diseases. Vol. 32 No. 11, pp: 963-970.
45
Panigrahi, A.; Kiron, V.; Puangkaew, J.; Kobayashi, T.; Satoh, S. and Sugita, H., 2005. The viability of probiotic bacteria as a factor influencing the immune response in rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Aquaculture. Vol. 243, pp: 241-254.
46
Řehulka, J., 2002. Aeromonas Causes Severe Skin Lesions in Rainbow Trout (Oncorhynchusmykiss): Clinical Pathology, Haematology, and Biochemistry. Acta Veterinaria Brno. Vol. 71, pp: 351-360.
47
Rojas A., 2007. Potential essential oil application within the salmon industry in chile. International Aqua Feed. September-October. pp: 32-36.
48
Son, V.M.; Chang, C.; Wu, M.C.; Guu, Y.K.; Chiu, C.H. and Cheng, W., 2009. Dietary administration Subramanian, S.; MacKinnon, S.L. and Ross, N.W., 2007. A comparative study on innate immune parameters in the epidermal mucus of various fish species. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 148, pp: 256-263.
49
Song, J.; Kwon, O.; Chen, S.; Daruwala, R.; Eck, P.; Park, J.B. and Levine. M., 2002. (SVCTI) and glucose transpoter isoform 2 (GLUT2), intestinal transporters for vitamin C and Glucose.The Journal of Biological Chemistry. Vol. 277, No. 18, pp: 15252-15260.
50
Talpur, A., 2014. Mentha piperita (Peppermint) as feed additive enhanced growth performance, survival, immune response and disease resistance of Asian seabass, Lates calcarifer (Bloch) against Vibrio harveyi infection. Aquaculture. Vol. 420-421, pp: 71-78.
51
Vasala, P.A., 2012. Ginger. In: Peter K.V. (Eds.) Handbook of herbs and spices. Woodhead Publishing Limited, India. pp: 319-335.
52
Webster, C.D.; Clark, J.A. and Yancey, D.H., 1992. Effects of Yucca shidigera extract on water quality and fish growth in recirculating water aquaculture systems. The Progressive Fish Culturist. Vol. 54, No. 3, pp: 196-201.
53
Winterbourn, C.C.; Hawkins, R.E.; Brian, M. and Carrell, R.W., 1975. The estimation of red cell superoxide dismutase activity. Journal of Laboratory and Clinical Medicine. Vol. 85, No. 2, pp: 337-341.
54
Yilmaz, S.; Ergun, S. and Sanver Celik, E., 2012. Effects of herbal supplements on growth performance of sea bass (Dicentrarchus labrax): Change in body composition and some blood parameters. Journal of BioScience and Biotechnology. Vol. 1, No. 3, pp: 217-222.
55
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی ایمنی زایی و محافظت کنندگی لیپوپلی ساکارید یرسینیا راکری (Yersinia ruckeri) در برابر یرسینیوزیس در ماهی قزلآلای رنگینکمان (Oncorhyncus mykiss)
با توجه به اهمیت یرسینیوزیس در کشور و ضرورت واکسیناسیون ماهی در این تحقیق اثر لیپوپلی ساکارید باکتری یرسینیا راکری بر کارایی و ایمنی زایی باکترین یرسینیا راکری در تجویز تزریقی، خوراکی و غوطه وری ارزیابی گردید. 480 قطعه ماهی (1/2± 7 گرم) به صورت تصادفی به 8 گروه مساوی، هر گروه در سه تکرار (هر تکرار 20 ماهی) تقسیم گردیدند. گروه A، B و C به ترتیب با خوراک حاوی LPS (سیصد میکروگرم/کیلوگرم/وزن بدن)، +LPSباکترین (109cfu/گرم) و باکترین در هفته اول و سوم تحقیق تغذیه شدند. در گروه غوطه وری (D) ماهی ها به مدت 2 دقیقه در روز صفر و 14 در سوسپانسیون باکترین (109cfu /میلی لیتر) غوطه ور شدند. گروه های تزریقی (E،F و G) به ترتیب با باکترین (1010cfu/میلی لیتر)، LPS (سیصد میکروگرم/میلی لیتر) و باکترین+LPS به روش داخل صفاقی ایمن شدند و در روزهای صفر، 30، 60 نمونه خون و سرم تهیه شده و شاخص های خونی و ایمنی بین ماهیان تیمارها مقایسه گردیدند. نتایج نشان داد که تزریق باکترین+ LPS تحریک شاخص های ایمنی غیراختصاصی و اختصاصی را به طور معنی داری در اکثر گروهها بهبود بخشید (0/05>p ). میزان کارایی تجویز باکترین+LPS درروش خوراکی با روش غوطه وری مشابه بوده و به طور معنی داری کم تر از روش تزریقی بود (0/05>p ). نتایج تحقیق جاری نشان داد که اضافه نمودن LPS به باکترین علاوه بر بهبود کارایی واکسن به روش تزریقی و خوراکی، ایمنی زایی آن ها را هم افزایش داد. لذا می توان بعد از مطالعات تکمیلی از آن به عنوان یک کاندید مناسب و اقتصادی در تهیه واکسن یرسینیوزیس در ماهی قزل آلا استفاده کرد.
http://www.aejournal.ir/article_119247_09c98d43eddcfe7bcc912bbf7ed1521f.pdf
2020-09-22
293
304
10.22034/aej.2020.119247
ماهی قزل آلای رنگین کمان
یرسینیوزیس
LPS
ایمنی زایی
زهرا
طولابی دزفولی
z.tulaby@gmail.com
1
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
مجتبی
علیشاهی
alishahimoj@gmail.com
2
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
مسعود
قربانپور
m.ghorbanpoor@scu.ac.ir
3
گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
مهرزاد
مصباح
mehrmesbah@yahoo.com
4
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
محمد رضا
تابنده
m.tabandeh@scu.ac.ir
5
گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
سلطانی، م.؛ موسوی، ش.؛ ابراهیم زاده موسوی، ح. و میرزرگر، س.، 1393. مطالعه مولکولی یرسینیا راکری، عامل یرسینیوزیس در برخی مزارع قزل آلای کشور. مجله دامپزشکی ایران. دوره 10، شماره 1، صفحات 59 تا 67.
1
علیشاهی، م. و طولابی دزفولی، ز.، 1396. واکسیناسیون ماهی. دانشگاه شهید چمران اهواز، فصل 6، صفحات 123 تا 137.
2
Abbass, A.; Sharifuzzaman, S.M. and Austin, B., 2010. Cellular components of probiotics control Yersinia ruckeri infection in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Journal of Fish diseases. Vol. 33, No. 1, pp: 31-37.
3
Altinok, I.; Capkin, E. and Boran, H., 2016. Comparison of molecular and biochemical heterogeneity of Yersinia ruckeri strains isolated from Turkey and the USA. Aquaculture. Vol. 450, pp: 80-88.
4
Apicella, M.A., 2008. Isolation and characterization of lipopolysaccharides. In Bacterial Pathogenesis. Humana Press. pp: 3-13.
5
Brandtzaeg, P. and Pabst, R., 2004. Let's go mucosal: communication on slippery ground. Trends in immunology. Vol. 25, No. 11, pp: 570-577.
6
Chettri, J.K.; Mehrdana, F.; Hansen, E.B.; Ebbensgaard, A.; Overgaard, M.T.; Lauritsen, A.H. and Buchmann, K., 2017. Antimicrobial peptide CAP18 and its effect on Yersinia ruckeri infections in rainbow trout Oncorhynchus mykiss (Walbaum): comparing administration by injection and oral routes. Journal of fish diseases. Vol. 40, No. 1, pp: 97-104.
7
Chettri, J.K.; Raida, M.K.; Kania, P.W. and Buchmann, K., 2012. Differential immune response of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) at early developmental stages (larvae and fry) against the bacterial pathogen Yersinia ruckeri. Developmental and Comparative Immunology. Vol. 36, No. 2, pp: 463-474.
8
Deshmukh, S.; Raida, M.K.; Dalsgaard, I.; Chettri, J.K.; Kania, P.W. and Buchmann, K., 2012. Comparative protection of two different commercial vaccines against Yersinia ruckeri serotype O1 and biotype 2 in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Veterinary immunology and immunopathology. Vol. 145, No. 1-2, pp: 379-385.
9
Dubois, M.; Gilles, K.A.; Hamilton, J.K.; Rebers, P.T. and Smith, F., 1956. Colorimetric method for determination of sugars and related substances. Analytical chemistry. Vol. 28, No. 3, pp: 350-356.
10
Ellis, A.E., 1990. Lysozyme assays. Techniques in fish immunology. Vol. 1, pp: 101-103.
11
Esteban, M.Á. and Cerezuela, R., 2015. Fish mucosal immunity: skin. In Mucosal health in aquaculture. Academic Press. pp: 67-92.
12
Fuglem, B.; Jirillo, E.; Bjerkås, I.; Kiyono, H.; Nochi, T.; Yuki, Y. and Koppang, E.O., 2010. Antigen-sampling cells in the salmonid intestinal epithelium. Developmental and Comparative Immunology. Vol. 34, No. 7, pp: 768-774.
13
Ghosh, B.; Nguyen, T.D.; Crosbie, P.B.; Nowak, B.F. and Bridle, A.R., 2016. Oral vaccination of first-feeding Atlantic salmon, Salmo salar L., confers greater protection against yersiniosis than immersion vaccination. Vaccine. Vol. 34, No. 5, pp: 599-608.
14
Ghosh, B.; Bridle, A.R.; Nowak, B.F. and Cain, K.D., 2015. Assessment of immune response and protection against bacterial coldwater disease induced by a live-attenuated vaccine delivered orally or intraperitoneally to rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Aquaculture. Vol. 446, pp: 242-249.
15
Giri, S.S.; Chi, C.; Jun, J.W. and Park, S.C., 2018. Use of bacterial subcellular components as immunostimulants in fish aquaculture. Reviews in Aquaculture. Vol. 10, No. 2, pp: 474-492.
16
Gomez, D.; Sunyer, J.O. and Salinas, I., 2013. The mucosal immune system of fish: the evolution of tolerating commensals while fighting pathogens. Fish and shellfish immunology. Vol. 35, No. 6, pp: 1729-1739.
17
Guttvik, A.; Paulsen, B.; Dalmo, R.A.; Espelid, S.; Lund, V. and Bøgwald, J., 2002. Oral administration of lipopolysaccharide to Atlantic salmon (Salmo salar L.) fry. Uptake, distribution, influence on growth and immune stimulation. Aquaculture. Vol. 214, No. 1, pp: 35-53.
18
Kadowaki, T.; Yasui, Y.; Nishimiya, O.; Takahashi, Y.; Kohchi, C.; Soma, G.I. and Inagawa, H., 2013. Orally administered LPS enhances head kidney macrophage activation with down-regulation of IL-6 in common carp (Cyprinus carpio). Fish and shellfish immunology. Vol. 34, No. 6, pp: 1569-1575.
19
Marsden, M.J.; Freeman, L.C.; Cox, D. and Secombes, C.J., 1996. Non-specific immune responses in families of Atlantic salmon, Salmo salar, exhibiting differential resistance to furunculosis. Aquaculture. Vol. 146, No. 1, pp: 1-16.
20
Matsuura, Y.; Takaoka, N.; Miyazawa, R. and Nakanishi, T., 2017. A simple and non invasive method for analyzing local immune responses in vivo using fish fin. Developmental and Comparative Immunology. Vol. 74, pp: 136-143.
21
Munang'andu, H.M. and Evensen, Ø., 2019. Correlates of protective immunity for fish vaccines. Fish & shellfish immunology. Vol. 85, pp: 140-132.
22
Nya, E.J. and Austin, B., 2010. Use of bacterial lipopolysaccharide (LPS) as an immunostimulant for the control of Aeromonas hydrophila infections in rainbow trout Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Journal of applied microbiology. Vol. 108, No. 2, pp: 686-694.
23
Plant, K.P. and LaPatra, S.E., 2011. Advances in fish vaccine delivery. Developmental and Comparative Immunology. Vol. 35, No. 12, pp:1256-1262.
24
Pridgeon, J.W.; Klesius, P.H.; Song, L.; and Zhang, D., 2013. Identification, virulence, and mass spectrometry of toxic ECP fractions of West Alabama isolates of Aeromonas hydrophila obtained from a 2010 disease outbreak. Veterinary Microbiology. Vol. 164, pp: 336-343.
25
Rucker, R.R., 1965. Redmouth disease of rainbow trout (Salmo gairdneri). Bulletin-office international des epizooties. Vol. 65, No. 5, pp: 825-830.
26
Ryckaert, J.; Bossier, P.; D’Herde, K.; Diez-Fraile, A.; Sorgeloos, P.; Haesebrouck, F. and Pasmans, F., 2010. Persistence of Yersinia ruckeri in trout macrophages. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 29, No. 4, pp: 648-655.
27
Selvaraj, V.; Sampath, K. and Sekar, V., 2006. Adjuvant and immunostimulatory effects of β-glucan administration in combination with lipopolysaccharide enhances survival and some immune parameters in carp challenged with Aeromonas hydrophila. Veterinary immunology and immunopathology. Vol. 114, No. 1, pp: 15-24.
28
Sharifi, Y. and Akhlaghi, M.H., 2008. Detection and identification of virulent Yersinia ruckeri the causative agent of enteric red mouth disease in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) cultured in Fars province, Iran. Iranian Journal of Veterinary Research Shiraz University. Vol. 9, No. 4, pp: 347-352.
29
Siwicki, A.K.; Anderson, D.P. and Rumsey, G.L., 1994. Dietary intake of immunostimulants by rainbow trout affects non-specific immunity & protection against furunculosis. Veterinary immunology & immunopathology. Vol. 41, No. 1-2, pp: 125-139.
30
Skalli, A.; Castillo, M.; Andree, K.B.; Tort, L.; Furones, D. and Gisbert, E., 2013. The LPS derived from the cell walls of the Gram-negative bacteria Pantoea agglomerans stimulates growth and immune status of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) juveniles. Aquaculture. Vol. 416, pp: 272-279.
31
Soltani, M. and Pourgholam, R., 2013. Some hematological and biochemical changes in blood serum of Grass carp (Ctenopharyngodon idella) vaccinated with Aeromonas hydrophila following exposure to sublethal concentration of diazinon. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 12, No. 1, pp: 12-23.
32
Soltani, M.; Fadaii, F. and Mehrabi, M.R., 1999. First report of a yersiniosis-like infection in Iranian farmed rainbow trout. Bulletin European Association of Fish Pathology. Vol. 9, No. 4, pp: 173-176.
33
Swain, P.S.; Dash, P.K.; Sahoo, P.; Routray, S.K.; Sahoo, S.D.; Gupta, P.K. and Meher, N., 2006. Non-specific immune parameters of brood Indian major carp Labeo rohita and their seasonal variations. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 22, pp: 38-43.
34
Thrall, M.A., 2004. Veterinary hematology and clinical chemistry. Lippincott Whiliams& Wilkins, New York. pp: 241-402.
35
Tobback, E.; Decostere, A.; Hermans, K.; Ryckaert, J.; Duchateau, L.; Haesebrouck, F. and Chiers, K., 2009. Route of entry and tissue distribution of Yersinia ruckeri in experimentally infected rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Diseases of aquatic organisms. Vol. 84, No. 3, pp: 219-228.
36
Villumsen, K.R.; Neumann, L.; Ohtani, M.; Strøm, H.K. and Raida, M.K., 2014. Oral and anal vaccination confers full protection against enteric redmouth disease (ERM) in rainbow trout. PLoS One. Vol. 9, No. 4, pp: 938-945.
37
Wang, E.; Chen, X.; Wang, K.; Wang, J.; Chen, D.; Geng, Y.; Lai, W. and Wei, X., 2016. Plant polysaccharides used as immunostimulants enhance innate immune response and disease resistance against Aeromonas hydrophila infection in fish. Fish and shellfish immunology. Vol. 59, pp: 196-202.
38
Zhang, D.; Pridgeon, J.W. and Klesius, P.H., 2014. Vaccination of channel catfish with extracellular products of Aeromonas hydrophila provides protection against infection by the pathogen. Fish and shellfish immunology. Vol. 36, No. 1, pp: 270-275.
39
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر پیش تیمار پلی فنول برشاخص های ایمنی موکوس پوست ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) در مواجهه با نانو ذرات نقره
با توجه به کاربرد روز افزون نانوذرات و استفاده از مکمل های غذایی در صنعت آبزی پروری، تحقیق حاضر به منظور بررسی اثرات بهینه مکمل غذایی در مقابل نانوذرات در آبزی پروی با بررسی پیش تیمار پلی فنول بر شاخص های ایمنی موکوس پوست ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) در مواجهه با نانو ذرات نقره انجام گرفت.230 عدد بچه ماهی با میانگین وزن 0/4±15/6 گرم به پنج تیمار بدون تغذیه با مکمل غذایی و عدم مواجهه با نانو ذرات نقره (شاهد منفی)، بدون تغذیه با مکمل غذایی و مواجهه با نانو ذرات نقره (شاهد مثبت)، تغذیه شده به ترتیب با 0/05، 0/1 و 0/2 گرم پودر پلی فنول در کیلوگرم غذا به مدت 60 روز تغذیه گردیدند، پس از آن طی 14 روز در مواجهه 50% غلظت کشنده نانو ذرات نقره قرار گرفتند. نتایج نشان داد فعالیت آنزیم لیزوزیم، میزان پروتئین محلول و ایمونوگلوبولین کل موکوس پوست در تیمارهای تغذیه شده با غلظت های مختلف عصاره پلی فنولی شاه بلوط طی مواجهه با نانو ذرات نقره افزایش معنی دار داشتند (0/05>p ). در کل نانو ذرات نقره دارای اثرات نامطلوب بر شاخص های ایمنی ماهی کپورمعمولی بود. غلظت 0/05 گرم عصاره پلی فنولی شاه بلوط در غلظت های مورد استفاده دارای اثراتمطلوب بر شاخص های فیزیولوژیکی ماهی کپورمعمولی مواجهه یافته با نانوذرات نقره بود.
http://www.aejournal.ir/article_119618_02b065bbe4b6f6a33f94e46275561bb3.pdf
2020-09-22
305
314
10.22034/aej.2020.119618
نانو ذرات نقره
سیستم ایمنی
موکوس
مکمل غذایی
ماهی کپور معمولی
وجیهه
نوری
vajihe.noori@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سید علی اکبر
هدایتی
hedayati@gau.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
سیدحسین
حسینی فر
hossein.hoseinifar@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
طاهره
باقری
bagheri1360@gmail.com
4
مرکز تحقیقات آبهای دور، موسسه تحقیقات شیلات ایران، سازمان تحقیقات، ترویج و آموزش کشاورزی، چابهار، ایران
AUTHOR
سید رضا
خالقی
seyedrezakhaleghi@yahoo.com
5
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
عادل، م.؛ صفری، ر.؛ منجی، ه. و وحیدفارابی، س.م.، 1394. تاثیر سطوح مختلف عصاره نعناع فلفلی بر شاخص های رشد، بازماندگی و ترکیبات لاشه بچه ماهی سفید (Rutilus frisii kutum). مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 5، شماره 1، صفحات 95 تا 102.
1
ستاری، م.؛ شاهسونی، د. و شفیعی، ش.، 1382. ماهی شناسی 2. نشر حق شناس. 597 صفحه.
2
هدایتی، ع.؛ قربانی، ر.؛ باقری، ط.؛ احمدوند، ش. و جهانبخشی، ع.، 1392. بررسی اثرات سمیت کشنده نانو اکسید روی، نانو اکسید مس (CuO NPs) و نانو دیاکسید تیتانیوم (TiO2 NPs) و بررسی اثرات سمیت تحت کشنده آن ها بر فاکتورهای خون و بافت آبشش ماهی قرمز (Carassius auratus)، کپور معمولی (Cyprinus carpio) و کلمه (Rutilus rutilus). طرح پژوهشی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 61 صفحه.
3
Baba, E.; Uluköy, G. and Öntaş, C., 2015. Effects of feed supplemented with Lentinula edodes mushroom extract on the immune response of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss, and disease resistance against Lactococcus garvieae. Aquaculture. Vol. 448, pp: 476-482.
4
Benn, T.; Cavanagh, B.; Hristovski, K.; Posner, J.D. and Westerhoff, P., 2010. The release of nanosilver from consumer products used in the home. Journal of environmental quality. Vol. 39, No. 6, pp: 1875-1882.
5
Blaise, C.; Gagne, F.; Ferard, J.F. and Eullaffroy, P., 2008. Ecotoxicity of selected nano materials to aquatic organisms. Environmental toxicology. Vol. 23, No. 5, pp: 591-598.
6
Bricknell, I. and Dalmo, R.A., 2005. The use of immunostimulants in fish larval aquaculture. Fish and Shellfish immunology. Vol. 19, pp: 457-472.
7
Chang, Ya.; Xia, L.; Zhang, M.; Zhang, J. and Xing, G., 2012. The Toxic Effects and Mechanisms of CuO and ZnO Nanoparticles. Materials. Vol. 5, No. 12, pp: 2850-2871.
8
Di Giulio, R.T. and Hinton, D.E., 2008. The Toxicology of Fishes dietary inulin and oligosaccharides as prebiotics for weaning Turbot (Psetta maxima).Aquaculture International. Vol. 14, pp: 219-229.
9
Esteban, M.A, 2012. An overview of the immunological defenses in fish skin. ISRN Immunology. International Scholarly Research Network. Article ID 853470, 29.
10
Fast, M.D.; Ross, N.W.; Mustafa, A.; Sims, D.E.; Johnson, S.C.; Conboy, G.A. and Burka, J.F., 2002. Susceptibility of rainbow trout Oncorhynchus mykiss, Atlantic salmon Salmo salar and coho salmon Oncorhynchus kisutch to experimental infection with sea lice Lepeophtheirus salmonis. Diseases of aquatic organisms. Vol. 52, No. 1, pp: 57.
11
Griffitt, R.J.; Luo, J.; Gao, J.; Bonzongo, J.C. and Barber, D.S., 2008. Effects of particle composition and species on toxicity of metallic nanomaterials in aquatic organisms. Environmental Toxicology and Chemistry. Vol. 27, No. 9, pp: 1972-1978.
12
Guardiola, F.A.; Dioguardi, M.; Parisi, M.G.; Trapani, M.R.; Meseguer, J.; Cuesta, A. and Esteban, M.A., 2015. Evaluation of waterborne exposure to heavy metals in innate immune defences present on skin mucus of gilthead seabream (Sparus aurata). Fish and shellfish immunology. Vol. 45, pp: 112-123.
13
Han, X.; Shen, T. and Lou, H., 2007. Dietary polyphenols and their biological significance. Int J Mol Sci. Vol. 8, No. 9, pp: 950-88.
14
Harikrishnan, R.; Balasundaram, C. and Heo, M.S., 2011. Impact of plant products on innate and adaptive immune system of cultured finfish and shellfish. Aquaculture. Vol. 317, No. 1, pp: 1-15.
15
Hedayati, A.; Jahanbakhshi, A. and Qaderi Rmazy, F., 2013. Aquatic Toxicology, GAU publication. Vol. I, First edition. pp: 70-76.
16
Hoseinifar, S.H.; Mirvaghefi, A.; Merrifield, D.L.; Amiri, B.M.; Yelghi, S. and Bastami, K.D., 2011. The study of some haematological and serum biochemical parameters of juvenile beluga (Huso huso) fed oligofructose. Fish physiology and biochemistry. Vol. 37, No. 1, pp: 91-96.
17
Hoseinifar, S.H.; Yousefi, S.; Capillo, G.; Paknejad, H.; Khalili, M.; Tabarraei, A.; Van Doan, H.; Spanò, N. and Faggio, C., 2018. Mucosal immune parameters, immune and antioxidant defence related genes expression and growth performance of zebrafish (Danio rerio) fed on Gracilaria gracilis powder. Fish & shellfish immunology. Vol. 83, pp: 232-237.
18
Iger, Y. and Abraham, M., 1997. Rodlet cells in the epidermis of fish exposed to stressors. Tissue and Cell. Vol. 29, No. 4, pp: 431-438.
19
Khan, M.S.; Jabeen, F.; Qureshi, N.A.; Asghar, M.S.; Shakeel, M. and Noureen, A., 2015. Toxicity of silver nanoparticles in fish: a critical review. J Bio Environ Sci. Vol. 6, No. 5, pp: 211-227.
20
Lowry, O.H.; Rosebrough, N.J.; Farr, A.L. and Randall, R.J., 1951. Protein measurement with the Folin phenol reagent. Journal of biological chemistry. Vol. 193, No. 1, pp: 265-275.
21
Magnadottir, B., 2006. Innate immunity of fish (overview). Fish and shellfish immunology. Vol. 20, pp: 137-151.
22
Mahmoud, R.; El-Sayed, I.; Doaa, B. and El-Sayed, M., 2013. Effect of supplementation of broiler diets with guava leaves and/or olive oil on growth, meat composition, blood metabolites and immune response. Benha Veterinary Medical Journal. Vol. 25, No. 2, pp: 23-32.
23
Miandare, H.K.; Yarahmadi, P. and Abbasian, M., 2016. Immune related transcriptional responses and performance of Litopenaeus vannamei post-larvae fed on dietary probiotic PrimaLac®. Fish and shellfish immunology. Vol. 55, pp: 671-678.
24
Palaks ha, K.J.; Shin, G.W.; Kim, Y.R. and Jung, T.S., 2008. Evaluation of non-specific immune components from the skin mucus of olive flounder (Paralichthys olivaceus). Fish and shellfish immunology. Vol. 24, No. 4, pp: 479-488.
25
Ross, N.W.; Firth, K.J.; Wang, A.; Burka, J.F. and Johnson, S.C., 2000. Changes in hydrolytic enzyme activities of naive Atlantic salmon Salmo salar skin mucus due to infection with the salmon louse Lepeophtheirus salmonis and cortisol implantation. Diseases of aquatic organisms. Vol. 41, No. 1, pp: 43-51.
26
Shahare, B.; Yashpal, M. and Singh, G., 2013. Toxic effects of repeated oral exposure of silver nanoparticles on small intestine mucosa of mice. Toxicology Mechanisms and Methods. Vol. 23, No. 3, pp: 161-167.
27
Sheikhzadeh, N.; Heidarieh, M.; Pashaki, A.K.; Nofouzi, K.; Farshbafi, M.A. and Akbari, M., 2012a. Hilyses, fermented Saccharomyces cerevisiae, enhances the growth performance and skin non-specific immune parameters in Rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish and shellfish immunology. Vol. 32, No. 6, pp: 1083-1087.
28
Sheikhzadeh, N.; Pashaki, A.K.; Nofouzi, K.; Heidarieh, M. and Tayefi-Nasrabadi, H., 2012b. Effects of dietary Ergosan on cutaneous mucosal immune response in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish and shellfish immunology. Vol. 32, No. 3, pp: 407-410.
29
Siwicki, A.K. and Anderson, D.P., 1993. Nonspecific defense mechanisms assay in fish: II. Potential killing activity of neutrophils and macrophages, lysozyme activity in serum and organs and total immunoglobulin level in serum. Fish Disease Diagnosis and Prevention Methods Olsztyn, Poland. pp: 105-12.
30
Stoclet, J.C.; Chataigneau, T.; Ndiaye, M.; Oak, M.H.; El Bedoui, J. and Chataigneau, M., 2004. Vascular protection by dietary polyphenols. Eur J Pharmacol. Vol. 500, No. 1-3, pp: 299-313.
31
Subramanian, S.; MacKinnon, Sh.L. and Ross, N.W., 2007. A comparative study on innate immune parameters in the epidermal mucus of various fish species. Comprative Biochemistry and Physiology. Vol. 148, pp: 256-263.
32
Vita, J.A., 2005. Polyphenols and cardiovascular disease: effects on endothelial and platelet function. Am J Clin Nutr. Vol. 81, No. 1, pp: 292S-297S.
33
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات استفاده از مولتی آنزیم ناتوزیم و بتایین بر فاکتورهای بیوشیمیایی خون در ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio)
در این آزمایشاثر مولتی آنزیم ناتوزیم و بتایین به صورت مجزا و ترکیبی بر شاخص های بیوشیمیایی سرم خون در ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) مورد بررسی قرار گرفت. بدین منظور 180 قطعه ماهی کپور از سر مزرعه با میانگین وزنی 0/5±19/5 گرم به مدت 8 هفته با جیره های آزمایشی در سه تیمار و سه تکرار حاوی سطوح مختلف 0، 1 و 1/5 درصد بتائین به صورت ترکیبی با سطوح 0، 250 و 500 میلی گرم ناتوزیم بر کیلوگرم غذا تغذیه شدند. در انتهای دوره فاکتورهای بیوشیمیایی خون کلسیم، گلوکز، الکالین فسفاتاز، پروتئین کل و آلبومین با استفاده از روش اسپکتروفتومتری بررسی شد. نتایج افزایش معنی دار (P≤0/05) میزان گلوکز با افزایش ناتوزیم در جیره، افزایش معنی دار (P≤0/05) کلسیم در تیمارهای دوزهای بالای ترکیبی ناتوزیم و بتایین، افزایش معنی دار (P≤0/05) الکالین فسفاتاز در تیمارهای ترکیبی ناتوزیم و بتایین، افزایش معنی دار (P≤0/05) آلبومین در تیمارهای دوزهای بالای ترکیبی ناتوزیم و بتایین را نشان داد. به طورکلی استفاده از بتایین و مولتی آنزیم ناتوزیم باعث بهبود فاکتورهای بیوشیمایی خون به عنوان شاخص های ایمنی در ماهی کپور گردید.
http://www.aejournal.ir/article_119928_f109081da0c1fdaf7dcbcf9ce584ec15.pdf
2020-09-22
315
322
10.22034/aej.2020.119928
ناتوزیم
بتایین
کپور
بیوشیمیایی خون
محمد
همایونی
mohammadhomayouni7292@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
محمدرضا
ایمانپور
imanpour@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
رقیه
صفری
fisheriessafari@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
افشارمازندران، ن.، 1381. راهنمای عملی تغذیه و نهاده های غذایی و دارویی آبزیان در ایران. انتشارات نوربخش، تهران. 216 صفحه.
1
خانی، ف.؛ ایمانپور، م.ر.؛ کلنگی میاندره، ح.؛ قائدی، ع. و تقی زاده، و.، 1394. اثر نوکلئوتید جیره بر پارامترهای خونی و بیوشیمیایی سرم خون تاس ماهی ایرانی جوان (Acipenser persicus). مجله علمی شیلات ایران. سال 24، شماره 3، صفحات 179 تا 189.
2
عادلیان، م.؛ ایمانپور، م.؛ تقی زاده، و. و مازندرانی، م.، 1395. استفاده از مولتی آنزیم ناتوزیم در جیره غذایی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) و اثرات آن بر شاخص های رشد و برخی از فاکتورهای بیوشیمیایی خون. فصلنامه علمی محیط زیست جانوری. سال 8، شماره 2، صفحات 207 تا 214.
3
محسنی، م.، 1396. کاربرد بتایین در افزایش رشد و بهبود سیستم ایمنی در تغذیه بچه فیل ماهی پرورشی (Huso huso). فصلنامه علوم آبزی پروری پیشرفته. سال 1، شماره 3، صفحات 1 تا 11.
4
محسنی، م.؛ پورکاظمی، م.؛ سیدحسنی، م.ح. و پورعلی، ح.ر.و.، 1395. تأثیر سطوح مختلف بتائین جیره غذایی بر رشد، ترکیب لاشه و برخی فراسنجه های خون شناسی و بیوشیمیایی سرم خون بچه فیل ماهی پرورشی Huso huso) .( پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. سال 4، شماره 3، صفحات 65 تا 80.
5
Afshar Mazandaran, N., 2002. A practical guide to nutrition and food based medicinal aquatic Iran. Publication of light. 216 p.
6
Bergstrom, J.R.; Tokach, M.D.; Nelssen, J.L. and DeRouchey, J.M., 2007. An evaluation of an enzyme blend (natuzyme®) in diets for weanling pigs. Kansas Agricultural Experiment Station Research Reports. pp: 1968-2014.
7
Borges, A.; Scotti, L.V.; Siqueira D.R.; JurinitzD.F. and Wassermann, G.F., 2004. Hematologic and serum biochemical values for jundia (Rhamdia quelen). Fish Physiology and Biochemical. Vol. 30, pp: 21- 25.
8
Doumas, B.T.; Watson, W.A. and Biggs,H.G., 1977. Albumin standards and the measurement of serum albumin with bromcresol green. Clinica Chimica Acta. Vol. 258, pp: 21-30.
9
Ghomi, M.R.; Shahriari, R.; Langroudi, H.F. and Nikoo, M., 2012. The effects of dietary enzyme on some blood biochemical parameters of the cultured great sturgeon Huso huso juveniles. Comparative Clinical Pathology. Vol. 21, No. 2, pp: 201-204.
10
Hajati, H., 2010. Effects of enzyme supplementation on performance, carcass characteristics, carcass composition and some blood parameters of broiler chicken. American Journal of Animal and Veterinary Sciences. Vol. 5, No. 2, pp: 155-161.
11
Hoseinifar, S.H.; Mirvaghefi, A.; MojaziAmiri, B.; Merrifield, D. and DarvishBastami, K., 2010. The study of some haematologic and serum biochemical parameters of juvenile beluga (Huso huso) fed dietary prebiotic oligofructose. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 31, pp: 91-96.
12
Kasumyan, A.O. and Doving, K.B., 2003. Taste preferences in fishes. Journal of Fish and Fisheries. Vol. 4, pp: 289-347.
13
Mohammadbeygi, M.; Imanpour, M.R.; Taghizadeh, V. and Shabani, A., 2013. Endo 1-3 (4) Beta-glucanasesupplementation of Barley Based Diet and Its Effect on Some Hematological Parameters of Common Carp. Global Veterinaria. Vol. 1, pp: 4-13.
14
Niroomand, M.; Sajad, M. and Yahyavi, M., 2011. Effect of dietary betaine on growth, survival, body composition and resistance of fry rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) under environmental stress. Iranian Scientific Fisheries Journal. Vol. 20, pp: 39-47.
15
Uz, M.N. and Göncüo lu, F.K.O.E. 2011. Kavuzu Al nm þ Arpan n B ld rc nlarda Performans ve Baz Kan Parametreleri Üzerine Etkisi.
16
Polat, A. and Beklevik, G., 1999. The importance of betaine and some attractive substances as fish feed additives, In: Brufu, J. and Tacon, A., (Eds.). Feed Manufacturing in the Mediterranean Regiaon: Recent Advances in Research and Technology Zaragoza, CIHEAM, IAMZ, Spain. pp: 217-220.
17
Razeghi, M.; Akrami, R.; Ghobadi, S.H.; Amani Denji, K.; Ezatrahimi, N. and Gharaei, A., 2012. Effects of dietary manna oligosaccharide (MOS) on growth performance, survival, body composition, and some hematological parameters in giant sturgeon juvenile (Huso huso). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 38, No. 3, pp: 829-835.
18
Ritz, C.W.; Hulet, R.M.; Self, B.B. and Denbow, D.M., 1995. Growth and intestinal morphology of male turkeys as influenced by dietary supplementation of amylase and xylanase. Poultry science. Vol. 74, No. 8, pp: 1329-1334.
19
Selle, P.H.; Ravindran, V.; Pittolo, P.H. and Bryden, W.L., 2003. Effects of phytase supplementation of diets with two tiers of nutrient specifications on growth performance and protein efficiency ratios of broiler chickens. Asian-Australasian J Anim Sci. Vol. 16, pp: 1158-1164.
20
Soltan, M.A., 2009. Effect of dietary fish meal replacement by poul try by-product meal with different grain source and enzyme supplementation on performance, faces recovery. Body composition and nutrient balance of Nile Tilapia. Pakistan Journal of Nutrition. Vol. 8, pp: 395-407.
21
Tietz, N.W., 1986. Textbook of clinical chemistry. WB Saunders, London.
22
Virtanen, M. and Hole, H., 1994. Betaine/aminoacid additive enhances the salt water performance of rainbow trout (Oncorhyncus mykiss) fed standard fish meal based diet. Fish Biology. Vol. 34, No. 2, pp: 223-232.
23
Yousefi, M.; Abtahi, B. and Abedian- Kenari, A., 2012. A Hematological, serum biochemical parameters, and physiological responses to acute stress of Beluga sturgeon (Huso huso) juveniles fed dietary nucleotide. Comparative Clinical Pathology. Vol. 21, pp: 1043-1048.
24
Zaghari, M.; Majdeddin, M.; Taherkhani, R. and Moravej, H., 2008. Estimation of nutrient equivalency values of Natuzyme and its effects on broiler chick performance. J App Poult Res. Vol. 17, pp: 446-453.
25
ORIGINAL_ARTICLE
اثر سطوح مختلف سرکه سیب بر برخی پارامترهای سیستم ایمنی غیراختصاصی سرم خون در بچه ماهیان کپورمعمولی (Cyprinus carpio)
اسیدهای آلی محصول طبیعی ناشی از تخمیر در گیاهان،از پتانسیل بالایی برای جایگزینی آنتی بیوتیک ها در صنعت آبزی پروری برخوردار می باشند. از این رو در این مطالعه از سرکه سیب به عنوان نوعی اسیدآلی در جیره غذایی بچه ماهیان کپور استفاده شد. هدف از این تحقیق بررسی اثر سرکه سیب در غلظت های مختلف (0، 1، 2 و 4 درصد سرکه سیب به جیره پایه) بر برخی پارامترهای ایمنی غیراختصاصی سرم بچه ماهیان کپور معمولی از جمله آلبومین (A)، گلوبولین (G)، نسبت A/G، پروتئین کل، آنزیم لیزوزیم و آلکالین فسفاتاز (ALp ) میباشد. بچه ماهیان کپور معمولی با میانگین وزن 0/5±15 گرم، به مدت 60 روز با جیره آزمایشی مورد تغذیه قرار گرفتند. در پایان آزمایش از هر تکرار تعداد 10 قطعه ماهی به صورت تصادفی صید و در محلول گل میخک بی هوش شده و نمونه خون از آن ها گرفته شد. میزان آلبومین و گلوبولین اندازه گیری شده در تیمارهای تغذیه ای در مقایسه با گروه شاهد افزایش معنی داری نشان نداد (0/05<p ). با این وجود پروتئین کل در سطح 2 درصد افزایش معنی داری را در مقایسه با سایر تیمارها و گروه شاهد نشان داد (0/05>p )، هم چنین در سطح 2 درصد سرکه سیب افزایش معنی دار در میزان فعالیت لیزوزیم مشاهده گردید (0/05>p ). در بررسی میزان الکالین فسفاتاز نیز اختلاف معنی داری میان تیمارهای تغذیه ای وگروه شاهد مشاهد نشد (0/05<p ).
http://www.aejournal.ir/article_119995_d6891c5a01fca5d2fb2ac08655681b85.pdf
2020-09-22
323
328
10.22034/aej.2020.119995
کپورمعمولی
سرکه سیب
ایمنی غیراختصاصی
حامد
نکوبین
nekoubin.hs@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
عبدالمجید
حاجی مرادلو
a_hajimoradloo@gau.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سیدحسین
حسینی فر
hossein.hoseinifar@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
اکرمی، ر.؛ ابرهیمی، ر.؛ شاملوفر، م. و رزاقی منصور، م.، 1393. تاثیر پروبیوتیک مانان الیگوساکارید بر عملکرد رشد، بازماندگی و مقاومت لارو ماهی قرل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). نشریه پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. دوره 2، شماره 3، صفحات 29 تا 42.
1
ابراهیم نژاد، ی.؛ شیوآزاد، م.؛ ناظرعدل، ک. و مرادی شهر بابک، م. 1385. تاثیر اسیدسیتریک و آنزیم فیتاز میکروبی بر عملکرد و میزان استفاده از فسفر فیتاته در جوجه های گوشتی تغذیه شده با جیره ذرت- کنجاله سویا. مجله تحقیقات دامپزشکی دانشگاه تهران. دوره 64، شماره 4، صفحات 407 تا 413.
2
Abdel-Tawwab, M.; Abdel-Rahman, A.M. and Ismael, N.E., 2008. Evaluation of commercial live bakers’ yeast, Saccharomyces cerevisiae as a growth and immunity promoter for Fry Nile tilapia, Oreochromis niloticus (L.) challenged in situ with Aeromonas hydrophila. Aquaculture. Vol. 280, No. 1-4, pp: 185-189.
3
Agrahari, S. and Gopal, K., 2009. Fluctuations of certain biochemical constituents and markers enzymes as a consequence of monocrotophos toxicity in the edible freshwater fish, Channa punctatus. Pesticide Biochemistry and Physiology. Vol. 94, pp: 5-9.
4
Bairwa, K.M.; Jakhar, J. and Reddy, A.D., 2012. Animal and plant originated immunostimulants used in aquaculture. Nat. Prod. Plant Resour. Vol. 2, No. 3, pp: 397-400.
5
Bashiri, R.; Ghadiri-Anari, A.; Hekmatimoghadam, H.; Dehghani, A. and Najarzadeh, A., 2014. The Effect of Apple Vinegar on Lipid Profiles and Anthropometric Indices in Type 2 Diabetes Patients with Dyslipidemia: A Randomized Clinical Trial. SSU_Journals. Vol. 22, No. 5, pp: 1543-1553.
6
Castillo, S.; Rosales, M.; Pohlenz, C. and Gatlin, D.M., 2014. Effects of organic acids on growth performance and digestive enzyme activities of juvenile red drum Sciaenops ocellatus. Aquaculture. Vol. 433, pp: 6-12.
7
Christiansen, R. and Lückstädt, C., 2008. Effects of different dosages of potassium diformate in fishmeal on the performance of Atlantic salmon Salmo salar. Abstract CD Rom. World Aquaculture Society. pp: 19-23.
8
Di Marco, P.; Priori, A.; Finoia, M.G.; Petochi, T.; Longobardi, A.; Donadelli, V. and Marino, G., 2011. Assessment of blood chemistry reference values for cultured sturgeon hybrids (Acipenser naccarii female× Acipenser baerii male). Journal of Applied Ichthyology. Vol. 27, No. 2, pp: 584-590.
9
Dugenci, S.K.; Arda, N. and Candan, A., 2003. Some medicinal plants as immunostimulant for fish. Ethnopharmacol. Vol. 88, pp: 99-106.
10
Ellis, A.E., 1990. Lysozyme assays. Techniques in fish immunology. Vol. 1, pp: 101-103.
11
Iman, M.; Moallem, S.A. and Barahoyee, A., 2015. Effect of applecider vinegar on blood glucose level in diabetic mice. Pharmaceutical Sciences. Vol. 20, pp: 163-168.
12
Iwama, G. and Nakanishi, T., 1996. The fish immune system. Academic Press, London. Chapter 3:innate Immunity in fish. pp: 73-114.
13
Kotzamanis, Y.P.; Gisbert, E.; Gatesoupe, F.J.; Infante, J.Z. and Cahu, C., 2007. Effects of different dietary levels of fish protein hydrolysates on growth, digestive enzymes, gut microbiota, and resistance to Vibrio anguillarum in European sea bass (Dicentrarchus labrax) larvae. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Molecular & Integrative Physiology. Vol. 147, No. 1, pp: 205-214.
14
Kumar, S.; Sahu, N.P.; Pal, A.K.; Choudhury, D.; Yengkokpam, S. and Mukherjee, S.C., 2005. Efffect of dietary carbohydrate on heamatology, respiratory burst activity and histological changes in L. rohita juveniles. Fish Shellfish Immunol. Vol. 19, pp: 331-334.
15
Luckstadt, C., 2008. Effect of organic acid containing additives in worldwide aquaculture sustainable production the non-antibiotic way. Acidifiers Anim Nutr. 71 p.
16
Ng, W.K. and Koh, C.B., 2011. Application of organic acids in aquafeeds: impacts on fish growth, nutrient utilisation and disease resistance. In: Lückstädt, C., (Ed.), Stan- dards for Acidifiers, Principles for the Use of Organic Acids in Animal Nutrition. Nottingham University Press, Nottingham, United Kingdom. pp: 49-58.
17
Ng, W.K.; Koh, C.B.; Sudesh, K. and Sitizahrah, A., 2009. Effects of dietary organic acids on growth, nutrient digestibility and gut microflora of red hybrid tilapia, Oreochromis sp., and subsequent survival during a challenge test with Streptococcus agalactiae. Aquaculture Research. Vol. 40, No. 13, pp: 1490-1500.
18
Pourmozaffar, S.; Hajimoradloo, A. and Kolangi Miandare, H., 2017. Dietary effect of apple cider vinegar and propionic acid on immune related transcriptional responses and growth performance in white shrimp, Litopenaeus vannamei. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 60, pp: 65-71.
19
Rao, Y.Y.; Das, B.K.; Iyotymayee, P. and Chakrabarti, R., 2006. Effect of Achyranthes aspera on the immunity and survival of Labeo rohita infected with Aeromonas hydrophila. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 20, pp: 265-273.
20
Romano, N.; Koh, C.B. and Ng, W.K., 2015. Dietary microencapsulated organic acids blend enhances growth, phosphorus utilization, immune response, hepatopancreatic integrity and resistance against Vibrio harveyi in white shrimp, Litopenaeus vannamei. Aquaculture. Vol. 435, pp: 228-236.
21
Safari, R.; Hoseinifar, S.H.; Nejadmoghadam, S. and Khalili, M., 2017. Apple cider vinegar boosted immunomodulatory and health promoting effects of Lactobacillus casei in common carp (Cyprinus carpio). Fish & shellfish immunology. Vol. 67, pp: 441-448.
22
Sakai, M., 1999. Current research status of fish immunostimulants, Aquacukture. Vol. 172, pp: 63-92.
23
Saori, M. and Boopathy, R., 2011. Effect of organic acids on shirimp pathogen, Vibrio harveyi. Current Microbiology. Vol. 63, pp: 1-7.
24
Shahidi, F.; McDonals, J.; Chandrasekara, A. and Zhong, Y., 2008. Phytochemicals of foods, beverage and fruit vinegars chemistry and health effects. Asia pacific Journal of Clinical Nutrition. Vol. 17, No. 1, pp: 380-382.
25
Su, X.; Li, X.; Leng, X.; Tan, C.; Liu, B.; Chai, X. and Guo, T., 2014. The improvement of growth, digestive enzyme activity and disease resistance of white shrimp by the dietary citric acid. Aquaculture international. Vol. 22, No. 6, pp: 1823-1835.
26
Sugiura, S.H.; Dong, F.M. and Hardy, R.W., 1998. Effects of dietary supplements on the availability of minerals in fish meal; preliminary observations. Aquaculture. Vol. 160, pp: 283-303.
27
Thomas, L.E.D., 1998. Clinical laboratory diagnostics. Frankfurt. Th-Books Verlagsgesellschaft. pp: 667- 678.
28
Wu, G.; Yuan, C.; Shen, M.; Tang, J.; Gong, Y.; Li, D.; Sun, F.; Huang, C. and Han, X., 2007. Immunological and biochemical parameters in carp (Cyprinus carpio) after Qompsell feed ingredients for longterm administration. Aquaculture Research. Vol. 38, No. 3, pp: 246-255.
29
Zhou, Z.; Liu, Y.; He, S.; Shi, P.; Gao, X.; Yao, B. and Ringo, E., 2009. Effects of dietary potassium diformate (KDF) on growth performance, feed conversion and intestinal bacterial community of hybrid tilapia (Oreochromis niloticus ♀× O. aureus ♂). Aquaculture. Vol. 291, No. 1-2, pp: 89-94.
30
ORIGINAL_ARTICLE
ﺗﺄﺛﻴﺮ ﺳﻄﻮح ﻣﺘﻔﺎوت ملاس چغندر جیره غذایی بر ترکیب لاشه وآنزیم های کبدی ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio)
در ﻣﻄﺎﻟﻌﻪ ﺣﺎﺿﺮ اﺛﺮات ﺳﻄﻮح ﻣﺨﺘﻠﻒ ملاس چغندر ﺑﺮ ترکیب لاشه و آنزیم های کبدی در ماهی کپور معمولی مورد بررسی قرار گرفت. در این آزمایش از 360 قطعه ماهی کپور معمولی با میانگین وزنی 2/5±28 گرم استفاده شد. بچه ماهیها در 12 مخزن به تعداد 30 قطعه در هر مخزن به طور تصادفی توزیع شد. پس از یک هفته آداپتاسیون، در یک دوره به مدت 8 هفته غذادهی انجام گرفت. آزمایش در قالب 4 تیمار و هر تیمار با 3 تکرار شامل: جیره فاقد ملاس (تیمار 1)، جیره حاوی 0/5 درصد ملاس (تیمار 2)، جیره حاوی 1 درصد ملاس (تیمار3) و جیره حاوی 2 درصد ملاس (تیمار 4) انجام شد و ماهی ها روزانه به میزان 3 درصد وزن بدن و دو بار در روز با جیره های آزمایشی تغذیه شدند. غذای گروه شاهد، غذای تجاری کپور معمولی شرکت فرادانه بدون ملاس بود. نتایج نشان داد بعد از تغذیه با جیره حاوی ملاس مقدار رطوبت و خاکستر لاشه در گروه شاهد اختلاف معنی داری با سایر تیمارها نداشت (0/05<p ). میزان چربی لاشه در تیمار 1 درصد ملاس و 2 درصد ملاس اختلاف معنی داری با گروه شاهد داشته و کاهش پیدا کرده است (0/05>p ). میزان پروتیئن لاشه در تیمار 1 درصد و 2 درصد ملاس اختلاف معنی داری با تیمار شاهد داشته و افزایش پیدا کرده است (0/05>p ). نتایج نشان داد، در میزان آنزیم های کبدی از جمله لاکتات دهیدروژناز، آلانین آمینوترانسفراز و آسپارتات آمینوترانسفراز بین تیمار شاهد و سایر تیمارها اختلاف معنی داری وجود ندارد ولی در مقادیر آلکانین فسفاتاز تیمار شاهد با سایر تیمارها اختلاف معنی داری وجود دارد (0/05>p ).
http://www.aejournal.ir/article_120029_f51b7a90f9be127ef5d0a628746cc1f7.pdf
2020-09-22
329
334
10.22034/aej.2020.120029
ترکیب لاشه
آنزیم کبدی
ملاس چغندر
مصطفی
بیگی
beygimostafa392@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
عبدالمجید
حاجی مرادلو
ahajimoradloo@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سیدحسین
حسینی فر
hossein.hoseinifar@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
علی
جافرنوده
a.jafar55@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
شاهسونی، د.؛ وثوقی، غ. و خضرایی نیا، پ.، 1380. تعیین برخی شاخص های خونی ماهیان خاویاری انگشت قد (قره برون و اوزون برون) در استان گیلان. مجله پژوهش و سازندگی. شماره 50، صفحات 14 تا 18.
1
Chesson, A., 1987. Supplementary enzymes to improve the utilization of pig and poultry diets. Recent Advances in Animal Nutrition. pp: 71-89.
2
Diane, W.C.; Ignacio, F.F.; Erkki, V.; Norman, C.S. and Thomas, J.C., 2003. Betaine improves growth, but does not induce whole body or hepatic palmitate oxidation in swine (Susscrofa domestica). Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 137, pp: 131-140.
3
Gamnam, A.L. and Sehrock, R.M., 1999. Immunostimulants in fish diets. Journal of Applied Aquaculture. Vol. 9, pp: 68-79.
4
Hoseinifar, S.H.: Roosta, Z.; Hajimoradloo, A. and Vakili, F., 2015. The effects of Lactobacillus acidophilus as feed supplement on skin mucosal immune parameters, intestinal microbiota, stress resistance and growth performance of black swordtail (Xiphophorus helleri). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 42, pp: 533-538.
5
Heidarieh, M.; Mirvaghefi, A.R.; Akbari, M.; Farahmand, H.; Sheikhzadeh, N.; Shahbazfar, A.A. and Behgar, M., 2012. Effect of dietary ergosan on growth performance, digestive enzymes, intestinal histology, hematological parameters and body composition of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 38, pp: 1169-1174.
6
Hernandez, L.H.H.; Barrera, T.C.; Mejia, J.C.; Mejia, G.C.; Del Carmen, M.; Dosta, M.; Del Lara Andrade, R. and Sotres, J.A.M., 2010. Effects of the commercial probiotic Lactobacillus casei on the growth, protein content of skin mucus and stress resistance of juveniles of the Porthole livebearer Poecilopsis gracilis (poecilidae). Aquaculture Nutrition. Vol. 16, pp: 407-411.
7
Moosavi-Nasab, M.; Ansari, S. and Montazer, Z., 2007. Fermentative production of lysine by Corynebacterium glutamicum from different carbon sources. Iran Agricultural Research. Vol. 26, pp: 99-106.
8
Nya, E.J. and Austin, B., 2009. Use of garlic (Allium sativum) to control Aeromonas hydrophylia infection in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish Diseases. Vol. 32, pp: 963-970.
9
Sakai, M., 1999. Current research status of fish immunostimulants. Aquaculture. Vol. 172, pp: 63-92.
10
Sheikhzadeh, N.; Karimi Pashaki, A.; Nofouzi, K.; Heidarieh, M. and Tayefi-Nasrabadi, H., 2012a. Effects of dietary Ergosan on cutaneous mucosal immune response in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 32, pp: 407-410.
11
Sheikhzadeh, N.; Heidarieh, M.; Karimi Pashaki, A.; Nofouzi, K.; Ahrab Farshbafi, M. and Akbari., M., 2012b. Hilyses, Fermented Saccharomyces cerevisiae, enhances the growth performance and skin non-specific immune parameters in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 32, No. 6, pp: 1083-1087.
12
Shirali, S.; Erfani Majd, N.; Mesbah, M. and Reza Seifi, M., 2012. Histological studies of common Carp ovarian development during breeding season in Khouzestan Province, Iran. World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 4, pp: 159-164.
13
Subramanian, S.; MacKinnon, Sh.L. and Ross, N.W., 2007. A comparative study on innate immune parameters in the epidermal mucus of various fish species. Comprative Biochemistry and Physiology, Part B. Vol. 148, pp: 256-263.
14
Turchini, G.M.; Mentasti, T.; Froyland, L.; Orban, E.; Caprino, F.; Moretti, V.M. and Valfre, F., 2003. Effects of alternative dietary lipid sources on performance, tissue chemical composition, mitochondrial fatty acid oxidation capabilities and sensory characteristics in brown trout. Aquaculture. Vol. 225, No. 1-4, pp: 251-267.
15
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی کیفی آب رودخانه قلعه رودخان با استفاده از تراکم ماکروبنتوزها و شاخص زیستی هیلسنهوف
شاخص های زیستی یکی از روش های ارزیابی کیفیت آب است. پاسخ ماکروبنتوزها به آلودگی آلی برای طبقه بندی کیفی آب، قابل اطمینان تر و حساسیت این موجودات به آلودگی های زیست محیطی متفاوت است. هدف از این مطالعه ارزیابی سلامت و میزان آلودگی آلی رودخانه قلعه رودخان با استفاده از تراکم ماکروبنتوزها، شاخص زیستی هیلسنهوف و تنوع شانون-وینر بود. نمونه برداری از اردیبهشت تا آذر ماه 1396 انجام گرفت. تعداد 5 ایستگاه انتخاب و با استفاده از نمونه بردار سوربر با چشمه 300 میکرون و مساحت 900 سانتی متر مربع در 3 تکرار نمونه برداری از ماکروبنتوزها صورت گرفت. نمونه ها در اتانول 96% فیکس و به آزمایشگاه انتقال داده شدند. تعداد 5134 نمونه از موجودات کفزی شناسایی شد که شامل 35 جنس از 30 خانواده، 10راسته، 4 رده و 3 شاخه بودند. بیش ترین فراوانی کفزیان مربوط به لارو حشرات آبزی بود و ترتیب فراوانی آن ها DipteraTrichoptera, Ephemeroptera و Plecoptera بودند. بیش ترین و کم ترین مقدار شاخص شانون (2/28 و 0/42) به ترتیب در ایستگاه 4 در اردیبهشت ماه و ایستگاه 3 در شهریور ماه بود. براساس شاخص زیستی هیلسنهوف (HFBI)، کیفیت آب در ایستگاه های 1 (بالادست)، ایستگاه 3 (قبل از استخر پرورش ماهی)، ایستگاه 4 (بلافاصله بعد از استخر پرورش ماهی قزل آلا) و ایستگاه 5 (در پایین دست) در وضعیت کیفی «خوب» و ایستگاه 2 (در مجاورت مرکز توریستی) در وضعیت «مناسب» بود. بررسی ماهانه از این شاخص، کم ترین و بیش ترین میزان به ترتیب در اردبیهشت «عالی» و آبان «مناسب» ارزیابی شد.
http://www.aejournal.ir/article_120159_895ba8e3e246c1ca2dc36dea579dbb60.pdf
2020-09-22
335
344
10.22034/aej.2020.120159
Diptera
Ephemeroptera
Trichoptera
Plecoptera
HFBI
فرشته
حاجی آقایی قاضی محله
fereshte.hj22@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
جاوید
ایمانپور نمین
javidiman@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
LEAD_AUTHOR
مسعود
ستاری
msattari647@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
اسماعیلی ساری، ع.، 1381. آلاینده ها، بهداشت استاندارد در محیط زیست. انتشارات نقش مهر. 399 صفحه.
1
سلیمی بنی، ل.؛ کبودوندپور، ش.؛ کمانگیر، ب. و نیک منش، س.، 1390. طبقه بندی کیفی رودخانه گاوه رود به روش Hilsenhoff با استفاده از ساختار جوامع ماکروبنتوزی. پنجمین همایش ملی و نمایشگاه تخصصی مهندسی محیط زیست، تهران.
2
شاپوری، م.؛ ذوالریاستین، ن. و آذرباد، ه.، 1389. ارزیابی سریع کیفیت آب رودخانه گرگانرود بر پایه شاخص های زیستی. فصلنامه علوم و فنون منابع طبیعی. سال 5، شماره 3، صفحات 115 تا 129.
3
طباطبایی، ط.؛ امیری، ف.؛ پذیرا، ا. و ممبینی، ش.، 1392. مطالعه ساختار و تنوع اجتماعات ماکروبنتیک رودخانه حله. مجله بیولوژی دریا. سال 2، شماره 1، صفحات 37 تا 46.
4
عباسپور، ر.؛ حسن زاده، ح.؛ علیزاده ثابت، ح.ر.؛ هدایتی فرد، م. و مسگران کریمی، ج.، 1392. بررسی کیفی آب رودخانه چشمه کیله با استفاده از جامع درشت بی مهرگان کفزی و فاکتورهای فیزیکی و شیمیایی آب. نشریه توسعه آبزی پروری. سال 7، شماره 4، صفحات 43 تا 56.
5
فرهنگی، م. و تیموری یانسری، م.، 1391. شناسایی بزرگ بی مهرگان (بنتوز) رودخانه محمدآباد (استان گلستان). محیط زیست جانوری. سال 4، شماره 2، صفحات 51 تا 56.
6
قانع ساسان سرایی، ا.، 1383. شناسایی ساختار جمعیت ماکروبنتوزهای رودخانه چافرود در استان گیلان با توجه به برخی عوامل کیفی آب (در محدوده روستای اورمال ملال). پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه تربیت مدرس. 98 صفحه.
7
کرمی، م.؛ میردار، ج. و نیکویان، م.، 1383. بررسی فراوانی میوبنتوزها و ارتباط آن ها با وضعیت رسوبات بستر در خورهای شمالی استان بوشهر. مجله علمی شیلات ایران. دوره 13، شماره 2، صفحات 151 تا 162.
8
میررسولی، ا.؛ قربانی، ر. و عباسی، ف.، 1390. ارزیابی زیستی رودخانه زرین گل (استان گلستان) با استفاده از ساختار جمعیت ماکروبنتوزها. نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 64، شماره 4، صفحات 357 تا 369.
9
میرزاجانی، ع.؛ قانع ساسان سرایی، ا. و خداپرست شریفی، ح.، 1387. ارزیابی کیفی رودخانه های منتهی به تالاب انزلی براساس جوامع کفزیان. مجله محیط شناسی. دوره 34، شماره 45، صفحات 31 تا 38.
10
نوان مقصودی، م.، 1391. بررسی کفزیان رودخانه قزل اوزن استان زنجان. مجله علمی شیلات ایران. دوره 21، شماره 4، صفحات 125 تا 138.
11
Abbaspour, R.; Hedayatifard, M.; Alizadeh Sabet, H.R.; Hassanzadeh, H. and Mesgaran Karimi, J., 2013. Bioassessment of macrobenthic fauna of the Cheshmeh Kileh River, Northern Iran. Am.-Eurasian J. Agriculture and Environmental Science. Vol. 13, No. 6, pp: 747-753.
12
Al-Shami S.A.; CheSalmah MdRawi, A.; Abdul Hamid, S.; Aziza, S. and Mohd nor, S., 2011. Influence of agricultural, industrial, andanthropogenic stresses on the distribution and diversity of macroinvertebrates inJuru RiverBasin, Penang, Malaysia a, b Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 74, pp: 1195-1202.
13
Balderas, E.C.S.; Grac, C.; Equille, L.B. and Hernandez, M.A.A., 2016. Potential application of macroinvertebrates indices in bioassessment of Mexican streams. Ecol. Indic. Vol. 61, pp: 558-567.
14
Boehme, E.A.; Zipper, C.E.; Schoenholtz, S.H.; Soucek, D.J. and Timpano, A.J., 2016. Temporal dynamics of benthic macroinvertebrate communities and their response to elevated specific conductance in Appalachian coalfield headwater streams. Ecological Indicators. Vol. 64, pp: 171-180.
15
Bronmark, Ch. and Hansson, L.A., 2005. The Biology of Lakes and ponds. Oxford university press. 338 p.
16
Camargo, J.A.; Alonso, A. and Puente, M.D.L., 2004. Multimetric assessment of nutrient enrichment in impounded rivers based on benthic macroinvertebrates. Environ. Monit. Assess. Vol. 96, pp: 233-249.
17
Cao, Y.; Wang, B.; Zhang, J.; Wang, L.; Pand, Y.; Wang, Q.; Jianf, D. and Dengf, G., 2016. Lake Macroinvertebrate assemblages and relationship with natural environment and tourism stress in Jiuzhaigou Natural Reserve. China. Ecological Indicators. Vol. 62, pp: 182-190.
18
Clews, E. and Ormerod, S.J., 2009. Improving bio diagnostic monitoring using simple combinations of standard biotic indices. River Res. Appl. Vol. 25, pp: 348-361.
19
Dos Santos, D.A.; Molineri, C.; Reynaga, M.C. and Basualdo, C., 2011. Which index is the best to assess stream health? Ecological Indicator. Vol. 11, No. 2, pp: 582-589.
20
Dudgeon, D., 2008. Tropical Streams Ecology. Elsevier, USA. 343 p.
21
Elliot, J.M., 1971. Some Methods for the Statistical Analysis of Samples of Benthic Invertebrates. Scientific Publication, Freshwater Biology Association, UK.
22
Gowen, R.J., 1991. Aquaculture and the environment. In: Aquaculture and the environment, De Pauw, N. and Joyce, J., (eds). Eur. Acuacult. Soc. Spec. Publ. Vol. 16, pp: 23-48.
23
Hilsenhoff, W. L., 1977. Use of arthropods to evaluate water quality of streams. Technical Bulletin No. 100, Department of Natural Resources, Madison, Wisconsin.
24
Hilsenhoff, W.L., 1988. Rapid field assessment of organic pollution with a family level biotic index. J. N. Am. Benthol. Soc. Vol. 7, pp: 65-68.
25
Jay, P.; Maharaj, B. and Pandit, K., 2010. A macro-invertebrate based new biotic index to monitor river water quality. Current Science. Vol. 99, No. 2, 25 p.
26
Loch, D.D.; West, J.L. and Perlmutter, D.G., 1999. The effect of trout farm effluent on the taxa richness of benthic macroinvertebrates. Aquaculture. Vol. 147, pp: 37-55.
27
Lydy, M.J.; Crawford, C.G. and Frey, J.W., 2000. A comparison of selected diversity, similary and biotic indices for detecting changes in benthic-invertebrate community structure and stream quality. Arch. Environ. Contom. Taxical. Vol. 39, pp: 469-479. Macroinvertebrates, Trac Trends in Analytical Chemistry. Vol. 36, pp: 92-102.
28
Mangadze, T.; Bere, T. and Mwedzi, T., 2016. Choice of biota in stream assessment and monitoring programs in tropical streams: a comparison of diatoms, macro invertebrates and fish. Ecol. Indic. Vol. 63, pp: 128-143.
29
Ming, C.; Chiu, T.; Yu, C. andMei, H.K., 2018. Seasonal patterns of stream macroinvertebrate communities inresponse to anthropogenic stressors in monsoonal Taiwan Journal of Asia-Pacific Entomology. Vol. 21, No. 1, pp: 423-429.
30
Morse, J.C.; Bae, Y.J.; Munkhjargal, G.; Sangpra Dub, N.; Tanida, K.; Vshivkova, T.S.; Wang, B.; Yang, L. and Yule, C.M., 2007. Freshwater biomonitoring with macro invertebrates inEastAsia. Front. Ecol. Environ.Vol. 5, pp: 33-42.
31
Murphy, J.F.; Winterbottom, J.H.; Orton, S.; Simpson, G.L.; Shilland, E.M. and Hildrew, A.G., 2014. Evidence of recovery from acidification in the macroinvertebrate assemblages of UK fresh waters: A 20-year time series. Ecological Indicators. Vol. 37, pp: 330-340.
32
Padisak, J.; Borics, G.; Grigorszky, I. and Soroczki Pinter, E., 2006. Use of phytoplankton assemblages for monitoring ecological status of lakes within the Water Framework Directive: the assemblage index. Hydrobiologia. Vol. 553, pp: 1-14.
33
Pan, B.Z.; Wang, Z.Y.; Li, Z.W.; Lu, Y.J.; Yang, W.J. and Li, Y.P., 2015. Macroinvertebrate assemblages in relation to environments in the West River, with implications for management of rivers affected by channel regulation projects. Quat. Int. Vol. 384, pp: 180-185.
34
Patric, K.R. and Reimer, C.W., 1975. The diatoms of the United States. Exclusive of Alaska and Hawaii. 688 p.
35
Pennak, R.W., 1953. Freshwater invertebrates of United States. The Ronald Press Company. 769 p.
36
Pillay, T.V.R., 2004. Aquaculture and the environment. Former Programmed. Fishing News Books, Blackwell Publishing, Ltd.
37
Pillay, T.V.R., 2007. Aquaculture and the environment. Former Programmed. Fishing News Books. Blackwell publishing. Ltd. 196 p.
38
Prouty, N.G.; Campbell, P.L.; Mienis, F.; Duineveld, G.; Demopoulos, A.W.J. Ross, S.W. and Brooke, S., 2016. Impact of Deepwater Horizon spill on food supply to deep sea benthos communities. Estuarine Coastal and Shelf Science. Vol. 169, pp: 248-264.
39
Quigley, M., 1986. Invertebrates of streams and rivers. Head of Studies in Environmental Biology. Nene College. Northampton, Edward Arnold. 83 p.
40
Romachandra, T.V.; Ahalya, N. and Murthy, C.R., 2005. Aquatic ecosystems conservation, restoration and management. Capital Publishing Company. New Delhi. pp: 27-50.
41
Sandin, L., 2003. Benthic macroinvertebrates in Swedish Stream: Community Structure. Taxon Richness and Series, Ecological Indicators (Threats to upland waters). Vol. 37, pp: 330-340.
42
Serra, Sóni R.Q.; Cobo, F.; Graça, MAC.; Doléded, S. and Feio, M.J., 2016. Synthesising the trait information of European Chironomidae (Insecta: Diptera): Towards a new database. Ecological Indicators. Vol. 61, pp: 282-292.
43
Shannon, C.E. and Wiener, W., 1949. The Mathematical Theory of Communication Urban.University of Illinois Press, Urbana, USA. 132 p.
44
Sharifinia, M.; Mahmoudifard, A.; Namin, J.I.; Ramezanpour, Z. and Yap, C.K., 2016. Pollution evaluation in the Shahrood River: do physico-chemical and macroinvertebrate based indices indicated same responses to anthropogenic activities Chemosphere. Vol. 159, pp: 584-594.
45
Stefanidis, K.; Panagopoulos, Y. and Mimikou, M., 2016. Impact assessment of agricultural driven stressors on their importance for understanding of ecological functioning of watercourses. Hydrobiologia. Vol. 564, pp: 171-181.
46
Veroli, A.D.; Selvaggi, R.; Pellegrino, R.M. and Goretti, E., 2010. Sediment toxicity and deformities of chironomid larvae in Lake Piediluco. Chemosphere. Vol. 79, pp: 33-39.
47
Welch, E.B., 1992. Ecological effect and waste water. 2nd ed. Capman & Hall. 425 p.
48
Zeybek, M.; Kalyoncu, H.; Karakas, B. and Özgul, S., 2014. The use of BMWP and ASPT indices for evaluation of water quality according to macroinvertebrates in Değirmendere Stream (Isparta, Turkey). Turkish Journal of Zoology. Vol. 38, pp: 603-613.
49
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی ترکیب و تنوع زیستی جوامع زئوپلانکتونی در آب های ساحلی استان بوشهر خلیج فارس
هدف از این تحقیق بررسی تنوع و تراکم زئوپلانکتون خلیج فارس در دو فصل سرد و گرم در منطقه بوشهر (سواحل غربی) بود. برای این منظور نمونه های زئوپلانکتونی از 18 ایستگاه در دو فصل زمستان (بهمن) 1395 و تابستان (مرداد) 1396 جمع آوری گردید. در فصل زمستان 18 گونه زئوپلانکتونی شناسایی شد در حالی که در فصل تابستان تنها 7 گونه زنوپلانکتونی مشاهده گردید. به طورکلی سخت پوستان دارای بیش ترین درصد فراوانی (48 درصد) و پس از آن نرم تنان و طنابداران هرکدام با 11 درصد قرار داشتند و بقیه به گروه های دیگر تعلق داشتند. در فصل زمستان بیش ترین فراوانی متعلق به گونه Acrocalanus spp به میزان 458±577 فرد در مترمکعب و در فصل تابستان بیش ترین فراوانی متعلق به گونه Centropages spp به میزان 487±848 فرد در مترمکعب در بود. در فصل زمستان تغییرات شاخص تنوع شانون بین 1/29 تا 3/05 بود. در فصل تابستان مقدار شاخص تنوع شانون در ایستگاه های مختلف بین (0/68 تا 1/83) متغیر بود و بیش ترین آن در ایستگاه (A1) و کم ترین مقدار آن در ایستگاه (D4) مشاهده گردید. در فصل زمستان بین دما با شاخص مارگالوف همبستگی مثبت معنی دار (0/05>p ) و با تراکم همبستگی منفی معنی دار وجود داشت (0/05>p )، در حالی که در فصل تابستان شاخص های تنوع با هیچ یک از پارامترهای محیطی همبستگی معنی داری نداشتند (0/05<p ).
http://www.aejournal.ir/article_120268_469167b8a9ebc5df1530df7cbd628445.pdf
2020-09-22
345
352
10.22034/aej.2020.120268
زئوپلانکتون
شاخص های زیستی
بوشهر
خلیج فارس
فاطمه
خاکسار
f_khaksar1361@yahoo.com
1
پژوهشگاه ملی اقیانوس شناسی و علوم جوی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
پریسا
نجات خواه معنوی
p_nejatkhah@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
آریا
اشجع اردلان
a_ashjaardalan@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
خدادادی،م.، 1370. شناسایی فراوانی پلانکتون های خلیج فارس از بحر کانسر تا خلیج نایبند. سازمان تحقیقات و آموزش شیلات ایران. مرکز تحقیقات شیلاتی خلیج فارس. بوشهر. 135 صفحه.
1
ربانی ها، م.؛ ایزدپناهی، غ.؛ محسنی زاده، ف. و عوفی، ف.، 1391. تغییرات اجتماع پلانکتون ها در آب های دور از ساحل جنوب استان بوشهر. اقیانوس شناسی. سال 3، شماره 11، صفحات 21 تا 31.
2
سواری، ا.، 1361. بررسی پلانکتون های منطقه بوشهر-کنگان خلیج فارس. سازمان تکثیر و توسعه آبزیان وزارت کشاورزی، ایران.
3
شاپوری، م.، 1391. بررسی ترکیب و فراوانی زئوپلانکتون آب های خلیج فارس محدوده خلیج نایبند و جزیره قشم. مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. دوره 7، شماره 3، صفحات 59 تا 68.
4
فلاحی کپور چالی، م.؛ دهقان، س. و اسلامی، ف.، 1382. گزارش پلانکتونی حوزه ایرانی خلیج فارس. پروژه هیدرولوژی و بیولوژی خلیج فارس، موسسه تحقیقات شیلات ایران.
5
Abohweyere, P.O., 1990. Study of Limnological parameters and potential fish yield in Kigera reservoir (Extensive system) in Kainji, New Bussa, Nigeria. Journal of Aquatic Sciences. Vol. 5, pp: 53-58.
6
AL-Khabbaz, M. and Fahmi, A.M., 1998. Distribution of Copepods in the ROPME Sea Area 1994. Terra Scientific Publishing Company. Tokyo, Japan.
7
Al-Yamani, F.Y.; Skryabin, V.; Gubanova, A.; Khvorov, S. and Prusova, I., 2011. Marine zooplankton practical guide. Kuwait Institute for Scientific Research, Kuwait. 399 p.
8
Baker, M.; Hosny, C.F.H. and Al-Suwailem, A.M., 2006. Contribution to the study of zooplankton diversity, abundance and biomass in Saudi waters, Arabian Gulf, Sultan Qaboos. Agricultural and Marine Sciences. Vol. 11, No. 1, pp: 71-88.
9
BioDiversity Pro beta. 1997. Programme written and developed by Neil McAleece, devised jointly by Lambshead, P.J.D. and Paterson, G.L.J., of the The Natural History Museum in London and J. D. Gage of the Scottish Association for Marine Science, Oban, Scotland.
10
Eco Zist Consulting Engineers. 1980. Environmental report. Atomic Energy Organization of Iran. Tehran, Iran.
11
Goswami, C.S., 1983. Production and zooplankton community structure in the lagoon & surrounding sea at Kavaratti Atoll (Lakshadweep). Indian journal of marine science. Vol. 12, pp: 31-35.
12
Hanazato, T.; Yasuno, M. and Hosomi, M., 1989. Significance of a low oxygen layer for a Daphnia population in Lake Yunoko, Japan. Hydrobiologia. Vol. 185, pp: 19-27.
13
Hickman, A.E.; Moore, C. and Sharples, J., 2012. Primary production and nitrate uptake within the seasonal thermocline of a stratified shelf sea. Mar. Ecol. Prog. Ser. Vol. 463, pp: 39-57.
14
Holden, M.J. and Green, J., 1960. The hydrology and plankton of River Sokoto. Journal Animal Ecology. Vol. 29, pp: 65 -84.
15
Margalef, M., 1972. Homage to Evelyn Hutchinson, why there is an upper limit in diversity. In Deevey, E.S., (ed.), Growth by intussusceptions, ecological essays in honor of G. Evelyn Hutchinson. Transaction Connecticut Academy of Arts and Science. Connecticut, USA. Vol. 44, pp: 211-235.
16
Marques, S.C.; Pardal, M.A.; Pereira, M.J.; Goncalves, F.; Marques, J.C. and Azeiteiro, U.M., 2007. Zooplankton distribution and dynamics in a temperate shallow estuary. Hydrobiologia. Vol. 587, pp: 213-223.
17
Vijverberg, J.; Dejen, E.; Leo, A.; Nagelkerke, J. and Sibbing, F.A., 2004. Temporal and spatial distribution of microcrustacean zooplankton in relation to turbidity and other environmental factors in a large tropical lake (L. Tana, Ethiopia). Hydrobiologia. Vol. 513, pp: 39-49.
18
Waniek, J.J.; Holliday, N.P.; Davidson, R.; Brown, L. and Henson, S.A., 2005. Freshwater control of onset and species composition of Greenland shelf spring bloom. Mar. Ecol. Prog. Ser. Vol. 288, pp: 45-57.
19
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی اثرات کارگاههای پرورش ماهی بر کیفیت آب رودخانههای هراز و تجن
ایجاد کارگاه های تکثیر و پرورش ماهیان سردابی بر روی رودخانه های هراز و تجن به عنوان بزرگ ترین و پرآب ترین رودخانه های استان مازندران بدون هیچ گونه مطالعهای در مورد فواصل مناسب بین کارگاه ها و هم چنین امکان پالایش آب خروجی قبل از ورود به مسیر رودخانه صورت میگیرد. در مطالعه حاضر، ارزیابی اثرات مزارع آبزیپروری بر کیفیت آب رودخانه های هراز و تجن با بررسی تاثیر کمی و کیفی پساب این مزارع بر خصوصیات فیزیکوشیمیایی آب رودخانه ها صورت گرفت. بدین منظور 9 ایــستگاه در رودخانه هراز و 5 ایستگاه در رودخانه تجن انتخاب و نمونه برداری شدند. نمونه برداری قبل از ورودی آب هر مزرعه و بعد از آن در دو ایـستگاه، یک ایستگاه در فاصله 100-50 متری و یک ایستگاه در فاصله 2-1/5 کیلومتری، انجام شد. نتایج نشان داد که این رودخانه ها در حال حاضر توان خودپالایی آلاینده های ناشی از کارگاه های پرورش ماهی را دارند ولی با توجه به سیاست کشور مبنی بر افزایش تعداد کارگاه های پرورش ماهیان سردابی و هم چنین به خاطر عدم کنترل آلاینده های وارده به این رودخانه ها، در فاصله زمانی نه چندان طولانی، آلودگی این رودخانه ها از معضلات جدی خواهد بود. فواصل مزارع پرورش ماهی ایجاد شده در رودخانه هراز مبنای علمی نداشته و بررسی حاضـر نشان می دهد که خودپالایی آن در فاصله 1/5-2 کیلومتری بعد از مزرعه نسبتاً قابل توجه می باشد. بنابراین رعایت این فاصله بین مزارع پرورش ماهی درحفظ سلامتی اکوسیستم رودخانه مؤثر می باشد. با توجه به این که پساب کلیه مزارع به طور مستقیم وارد اکوسیستم رودخانه می گردند، لذا بهتـر است کلیه این واحدها از سیستم های تصفیه پساب استفاده نمایند.
http://www.aejournal.ir/article_120283_17d11bcc1a0d7fa022d392dc96361e8d.pdf
2020-09-22
353
364
10.22034/aej.2020.120283
پساب
مرزعه پرورش ماهی
قزلآلای رنگینکمان
هراز
تجن
ایمان
شیردل
imanshirdel@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
LEAD_AUTHOR
حسینعلی
زبردست رستمی
zabardast.h@yahoo.com
2
دفتر مطالعات پایه منابع آب، شرکت آب منطقهای مازندران، ساری، ایران
AUTHOR
اسماعیلی ساری، ع.، 1380. مبانی مدیریت کیفی آب در آبزی پروری. موسسه تحقیقات شیلات ایران. تهران. 260 صفحه.
1
کاظم زاده خواجویی، ا.، 1381. ارزیابی آلودگی ناشی از کارگاه های پرورش ماهی قزل آلا در رودخانه هراز. پایان کارشناسی ارشد مهندسی محیط زیست. دانشگاه تربیت مدرس. 82 صفحه.
2
نادری جلودار، م.؛ اسماعیلی ساری، ع.؛ احمدی، م.ر.؛ سیف آبادی، س.ج. و عبدلی، ا.، 1385. بررسی آلودگی ناشی از کارگاه های پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان بر روی پارامترهای کیفی آب رودخانه هراز. مجله علوم محیطی. سال 4، شماره 2، صفحات 21 تا 36.
3
Amirkolaie, A.K., 2008. Environmental impact of nutrient discharged by Aquaculture waste water on the Haraz River. Journal of Fisheries and Aquatic Sciences.Vol. 3, No. 5, pp: 275-279.
4
APHA. 1998. Standard method for examination of water and wastewater. American Public Health Association.
5
Costa-Pierce, B.A., 2002. Ecological Aquaculture: The Evolution of the Blue Revolution Blackwell Science. Oxford, UK. pp: 17-20.
6
Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO). 2010. Fisheries and Aquaculture Information and Statistics Service, FAO Year Book, Aquaculture Production 1950-2008. Rome, Italy. pp: 28-40.
7
Loch, D.D.; West, J.L. and Perlmutter, D.G., 1996. The effect of trout farm effluent on the taxa richness of benthic macroinvertebrates. Aquaculture. Vol. 147, pp: 37-55.
8
Phillips, M.J.; Beveridge, M.C.M. and Muir, J.G., 1985. Waste output and environmental effects of rainbow trout culture. ICES CM 1985/F: 21.
9
Rennert, B., 1994. Water pollution by a land-based trout farm. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 16, pp: 373-378.
10
Selong, J.H. and Helfrich, L.A., 1998. Impact of trout culture effluent on water quality and biotic communities in Virginia Headwater streams. The progressive fish culturist. Vol. 76, pp: 247-262.
11
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی و رتبه بندی راه حل های خروج از بحران دریاچه ارومیه با به کارگیری روش دلفی
خشکسالی یکی از پدیده های طبیعی است که بیش ترین آسیب آن در مناطق بیابانی و نیمه بیابانی به چشم می خورد. حوضه آبریز دریاچه ارومیه با تراکم جمعیت نسبتاً زیاد، امروزه یکی رویدادهای مهم زیست محیطی ایران می باشد. به طوری که در سال های اخیر به دلیل ورود حجم آب کم از رودخانه ها و کمبود بارش منطقه ای حیات این دریاچه در معرض تهدید جدی قرار گرفته است. این حوضه آبریز با مساحت 52000 کیلومتر مربع و میانگین بارش 200 تا 900 میلی متر، حجم آبی در حدود 22 میلیارد مترمکعب بارش در سطح حوضه را دارا می باشد. برای تامین نیازهای کشاورزی و انسانی به آب شیرین، سدهای زیادی با حجم ذخیره حدود 3 میلیارد مترمکعب در روی بستر رودخانه های اصلی دریاچه احداث شده است. با عنایت به کاهش مساحت دریاچه و ورود میزان آب در نظر گرفته شده به دریاچه، احیای کامل دریاچه به وضع طبیعی قبلی بعید به نظر می رسد. در این تحقیق سعی شده است تا با شناسایی و رتبه بندی، راه حل های خروج از بحران به روش دلفی و رتبه بندی سلسله مراتبی حد تاثیر هر کدام از راهکارها را تبیین نمود و به اولویت های مدیریتی دست یافت. براساس نتایج این تحقیق از چهار معیار اصلی و 21 زیرمعیار شناسایی شده، تامین حقابه رودخانه ها و تالاب ها و آبخوان های منتهی به دریاجه با تاثیر 32 درصد و استفاده از روش های نوین آبیاری با تاثیر 10/2 درصد از مهم ترین راه حل های خروج از بحران دریاچه ارومیه شناخته شدند.
http://www.aejournal.ir/article_120305_aa1c122bd2e41638b53a940d5769f9e6.pdf
2020-09-22
365
370
10.22034/aej.2020.120305
بحران
رتبه بندی
دریاچه ارومیه
روش دلفی
علی رضا
اعجازی
ejazi_171@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
محمود
شریعت
ma_shariat@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
پروین
فرشچی
parvin.farshchi@gmail.com
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
احمدیان، م. و اصغری، س.، 1392. عواقب زیست محیطی کاهش سطح آب دریاچه ارومیه و راهکارهای نجات آن. مجله جغرافیایی سرزمین. دوره 10، شماره 40، صفحات 81 تا 96.
1
پژوهشکده مهندسی آب دانشگاه تربیت مدرس. 1395. طرح تعیین نیاز آبی زیست محیطی تالاب ها و رودخانه های حوضه آبریز دریاچه ارومیه. گزارش مطالعات هیدرولوژی، جلد نهایی، برهمکنش تالاب ها و آب های زیر زمینی. اداره کل حفاظت محیط زیست استان آذربایجان شرقی.
2
شرکت مهندسین مشاور جاماب. 1384. مدیریت منابع آب ایران. وزارت نیرو، دفتر حفاظت.
3
صالح نیا، م.؛ حیاتی، ب.؛ قهرمان زاده، م. و مولایی، م.، 1392. برآورد ارزش بهبود وضعیت زیست محیطی دریاچه ارومیه: کاربرد روش آزمون انتخاب. مجله اقتصاد و توسعه کشاورزی. جلد 27، شماره 4، صفحات 267 تا 276.
4
صفاری، ن. و ضرغامی، م.، 1392. تخصیص بهینه منابع آب سطحی حوضه دریاچه ارومیه به استان های ذینفع با روش های تصمیم گیری فاصله محور. نشریه دانش آب و خاک. دوره 23، شماره 1، صفحات 135 تا 149.
5
طلوعی، ظ.؛ دلاور، م.؛ مرید، س. و احمدزاده، ح.، 1394. تحلیل عدم قطعیت تاثیر سیستم های آبیاری تحت فشار بر جریان خروجی از حوضه دریاچه ارومیه، مطالعه موردی: حوضه زرینه رود. مجله تحقیات منابع آب ایران. سال 11، شماره 2، صفحات 135 تا 145.
6
عباس نژاد، م.؛ خلیلی، ک. و بهمنش، ج.، 1394. کاربرد مدل تلفیقی AR-ARCH در پیشبینی تراز دریاچه ارومیه. دانش آب و خاک. جلد 25، شماره 2، صفحات 168 تا 175.
7
عقیلی، س.م.؛ خوشفر، غ.ر. و صالحی، ص.، 1388. سرمایه اجتماعی و رفتارهای زیست محیطی مسئوولانه در شمال ایران. مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی. جلد 16، شماره 1، صفحات 1 تا 16.
8
فتحی، م.؛ مددی، ع.؛ بهشتی، ا. و سرمستی، ن.، 1394. ارزیابی نوس انهای سطح آب دریاچة ارومیه و افزایش پهنه های نمکی در منطقة شمال غرب ایران. پژوهش های جغرافیای طبیعی. دوره 47، شماره 2، صفحات 271 تا 285.
9
قبادی، ف.؛ ثقفیان، ب. و عراقی نژاد، ش.، 1393. تعیین آستانه خشکسالی ابزار مدیریت واقع بینانه منابع آب در حوضه دریاچه ارومیه. تحقیقات منابع آب. سال 10، شماره 2، صفحات 66 تا 76.
10
قاسمی، ی.، 1393. توسعه بهینه اکوتوریسم در مناطق حفاظت شده دریاچه ارومیه به روش برنامه ریزی راهبردی.
11
کمالی، م. و یونس زاده جمالی، س.، 1394. بررسی تغییرات کاربری اراضی حوضه آبریز دریاچه ارومیه با استفاده از تصاویر ماهواره ای. طرح دانشگاه صنعتی شریف.
12
کمیته اجتماعی-فرهنگی ستاد احیای دریاچه ارومیه. 1394. دریاچه ارومیه، علل خشکی و تهدیدات احتمالی. شهریور ماه.
13
لک، ر.؛ درویشی خاتونی، ج. و محمدی، ع.، 1390. مطالعات پالئولیمنولوژی و علل کاهش ناگهانی تراز آب دریاچه ارومیه. مجله زمین شناسی کاربردی. سال 7، شماره 4 صفحات 343 تا 358.
14
محمدزاده، ش.؛ صدقی، ح.؛ پزشکی راد، غ. مخدوم، م. و شریفی کیا، م.، 1393. تحلیل پیامدهای تغییر کاربری اراضی زراعی به باغی از دیدگاه باغداران در غرب حوضة آبریز دریاچة ارومیه. مجله تحقیقات اقتصاد و توسعه کشاورزی ایران. دوره 45، شماره 4، صفحات 775 تا 785.
15
محمدی یگانه، ب.؛ ولانی، م. و چراغی، م.، 1392. اثرات کاهش سطح آب دریاچه اورمیه در اقتصاد کشاورزی روستاهای پیرامون (مطالعه موردی: دهستان مرحمت آباد شمالی، شهرستان میاندوآب). مجله جغرافیا و مخاطرات طبیعی. دوره 2، شماره 5، صفحات 56 تا 71.
16
مرکز آمار ایران. 1390. نتایج تفصیلی سرشماری عمومی نفوس و مسکن 1390. معاونت برنامه ریزی و نظارت راهبردی ریاست جمهوری.
17
واعظی هیر، ع.؛ ساری صراف، ب. و والائی، ا.، 1395. بررسی علل کاهش جریان در رودخانه های شاخص جنوب شرق دریاچه ارومیه. فصلنامه فضای جغرافیای دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهر. دوره 16، شماره 53، صفحات 123 تا 150.
18
وزارت جهادکشاورزی. 1389. ضرورت نظارت بر بهره برداری از پروژه های آبیاری تحت فشار. دفتر بهبود و توسعه روش های آبیاری معاونت آب و خاک.
19
ولی زاده، ن.؛ بیژنی، م. و عباسی، ع.، 1394. تحلیل محیط زیست گرایانه رفتار مشارکتی کشاورزان در حفاظت از منابع آب سطحی در حوزه جنوبی آبریز دریاچه ارومیه. علوم ترویج و آموزش کشاورزی ایران. جلد 11، شماره 2، صفحات 183 تا 201.
20
http://ulrp.sharif.ir
21
World Commission on Dams. 2016. Dams and development: A new framework for decision-making: The report of the world commission on dams. Earthscan.
22
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر عوامل محیطی بر میزان موجودات نشست کننده زیستی در قفس های پرورش ماهیان در منطقه ایوشان خرم آباد
موجودات نشست کننده زیستی دارای تنوع بالا و پراکنش جهانی و به طور پیوسته تحت تاثیر عوامل محیطی هستند و یکی از بزرگ ترین مشکلات جهانی در آبزی پروری ماهیان در قفس به شمار می روند. مطالعه حاضر با هدف بررسی اثر عوامل محیطی بر جمعیت موجودات نشست کننده زیستی در قفس های پرورش ماهیان قزل آلای رنگین کمان سد ایوشان خرم آباد از زمستان 1395 الی پاییز 1396 انجام شد. نمونه ها، به منظور بررسی میزان زی توده و ترکیب گروه های موجودات نشست کننده زیستی، از پانل های توری (0/0625 مترمربع) متصل شده به چهارچوب PVC، مستقر در عمق یک متری کنار قفس های پرورش ماهی جداسازی شدند و وزن تر اندازه گیری شد سپس با استفاده از کلیدهای شناسایی معتبر شناسایی گردید. در این مطالعه 3 جنس از جلبک سبز و دیاتوم شناسایی شدند. براساس نتایج حاصل از تحلیل (DCA)، اکسیژن محلول، دما، اسیدیته، کدورت وهدایت الکتریکی، با جنس های Naviculaceae از دیاتوم ها و Tetrasporaceae، Chlamydomonadaceae از جلبک های سبز همبستگی مثبتی را نشان دادند، اما بر اساس تحلیل همبستگی پیرسون دما و اسیدیته با وزن تر، درصد پوشش جلبکی و جنس های Naviculaceae ،Tetrasporaceae درفصل تابستان همبستگی مثبت و معنی داری داشتند(0/05>p ). با توجه به این که عوامل محیطی به خصوص دما و اسیدیته بر توسعه موجودات نشست کننده زیستی تاثیر داشتند بیش ترین کنترل بر قفس ها باید در زمان فصل تابستان با شستن تور هر ماه یک بار صورت بگیرد.
http://www.aejournal.ir/article_120443_6466db5de6c852a0ab8bb5f2ffcef597.pdf
2020-09-22
371
380
10.22034/aej.2020.120443
فولینگ
عوامل محیطی
قفس های پرورش ماهی
سد ایوشان خرم آباد
فاطمه
رادفر
radfar.fateme@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشگده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
محسن
صفائی
msn_safaie@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشگده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
سعید
گرگین
sgorgin@gau.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیطزیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
همیرا
آگاه
aaagah_hom@yahoo.com
4
گروه زیست دریا، پژوهشگاه ملی اقیانوس شناسی و علوم جوی، تهران، ایران
AUTHOR
غلامرضا
رفیعی
ghrafiee@ut.ac.ir
5
گروه شیلات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
رسولی، ع.ا.؛ بابائیان، ا.؛ قائمی، ه. و زواررضا، پ.، 1390. ارتباط بین بارش های فصلی ایران و دمای پهنه های آبی منطقه ای. پژوهش های اقلیم شناسی. صفحات 72 تا 90.
1
شریفی نیا، م.؛ ایمانپورنمین، ج. و رمضانپور، ز.، 2012. کاربرد تکنیک رسته بندی در بررسی جمعیت دیاتومه ها و ارتباط آن ها با عوامل محیطی (مطالعه موردی: رودخانه ماسوله رودخان). زیست شناسی میکروارگانیسم ها. دوره 1، شماره 1، صفحات 11 تا 22.
2
وحیدی، ف.؛ موسوی ندوشن، ر.؛ فاطمی، م.ر.؛ جمیلی، ش. و خم خاجی، ن.، 2010. بررسی ساختار جمعیت جلبک های سبز و سیانوباکترهای دریاچة ولشت. زیست شناسی کاربردی. دوره 23، شماره 1، صفحات 60 تا 71.
3
Bloecher, N.; Olsen, Y. and Guenther, J., 2013. Variability of biofouling communities on fish cage nets: A 1-year field study at a Norwegian salmon farm. Aquaculture. Vol. 416, pp: 302-309.
4
Braithwaite, R.A.; Carracosa, M.C. and McEvoy, L.A., 2007. Biofouling of salmon cage netting and the efficacy of a typical copper-based antifoulant. Aquaculture. Vol. 262, pp: 219-226.
5
Cheah, S.H. and Chua, T.E., 1979. A preliminary study of the tropical marine fouling organisms on floating net cages. Malay. Nat. J. Vol. 33, pp: 39-48.
6
Cronin, E.R.; Cheshire, A.C.; Clarke, S.M. and Melville, A.J., 1999. An investigation into the composition, biomass and oxygen budget of the fouling community on a tuna aquaculture farm. Biofouling. Vol. 13, pp: 279-299.
7
Dubost, N.; Masson, G. and Moreteau, J.C., 1996. Temperate freshwater fouling on floating net cages: method of evaluation, model and composition. Aquaculture. Vol. 143, pp: 303-318.
8
Hodson, S.L.; Burke, C.M. and Lewis, T.E., 1995. In situ quantification of fish-cage fouling by underwater photography and image analysis. Biofouling. Vol. 9, pp: 145-151.
9
Hodson, S.L.; Burke, C.M. and Bissett, A.P., 2000. Biofouling of fish cage netting: the efficacy of a silicone coating and the effect of netting colour. Aquaculture. Vol. 184, pp: 277-290.
10
Holmström, C. and Kjelleberg, S., 1994. The effect of external biological factors on settlement of marine invertebrate and new antifouling technology. Biofouling. Vol. 8, No. 2, pp: 147-160.
11
Huse, I.; Bjordal, A.; Femo, A. and Furcvik, D., 1990. The effect of shading in pen rearing of Atlantic samon (Salmo salar). Aquacult. Eng. Vol. 9, pp: 235-344.
12
Isik, O.; Hizaric, L.; Sayin, S.; Gokpinar, S. and Durmaz, Y., 2006. The effect of the environmental factors on the vitamin C (ascorbic acid), E (alpha-tocopherol), carotene contents and the fatty acid composition of Spirulina platensis. J of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 23, pp: 257-261.
13
John, D.M.; Whitton, B.A. and Brook, A.J., 2002. The freshwater algal flora of the british Isies. An identification guide to freshwater and terrestrial algae. The natural history museum Cambridge.
14
Juneja, A.; Ceballos, R.S. and Murthy, G., 2013. Effects of Environmental Factors and Nutrient Availability on the Biochemical Composition of Algae for Biofuels Production: A Review. Energies. Vol. 6, pp: 4607-4638.
15
Kagalou, L.; Tsimarakis, G.L. and Paschos, L., 2001. Water chemistry and biology in a shallow lake. Journal of Global nest, Greece. Vol. 2, pp: 58-94.
16
Kassah, J.E, 2012. Development of biofouling on salmon cage nets and the effects of anti fouling treatments on the survival of the hydroid, Norwegian University of Science and Technology. Department of Biology. 65 p. (Ectopleura larynx) (Ellis and Solander, 1786).
17
Krammer, K. and Lange-Bertalot, H., 2005. Bacillariophyceae, Süsswasserflora von Mitteleuropa. New York: Gustav Fischer Verlag, Stuttgart. 1986-2004.
18
Lee, H.B.; Lim, L.C. and Cheong, L., 1985. Observations on the use of antifouling paint in netcage fish farming in Singapore. Singap. J. Prim. Ind. Vol. 13, pp: 1-12.
19
Lovegrove, T., 1979. Control of fouling in farm cages. Fish Farm. Int. Vol. 6, No. l, pp: 33-37.
20
Meseck, S.L.; Alix, J.H.; Gary, H. and Wikfors, G.H., 2005. Photoperiod and light intensity effects on growth and utilization of nutrients by the aquaculture feed microalga, Tetraselmis chui. Aquaculture. Vol. 246, pp: 393-404.
21
Mohamed, E.N.H.H., 2012. Studies on the Manufacture of Marine Nano Antifouling Material. Diss. Faculty of Engineering at Cairo University in Partial Fulfillment of the Requirements for the degree of doctor of pHilospHy in chemical engineering faculy of engineering, cairo university giza. 25 p.
22
Moring, J.R. and Moring, K.A., 1975. Succession of net biofouling material and its role in the diet of pen-cultured chinook salmon. Prog. Fish-Cult. Vol. 37, No. l, pp: 27-30.
23
Pondella, D.J.; Stephens, J.S. and Craig, M.T., 2002. Fish production of a temperate artificial reef based on thedensity of embiotocids. ICES Journal of Marine Science. Vol. 59, No. 88-93.
24
Richmond, A., 1986. Cell response to environmental factors, In: Hand-book of Microalgal Mass Culture (Richmond A, ed), CRC Press, Boca Raton. pp: 69-99.
25
Sonneman, J.A.; Entwisle, T.J. and Lewis, S.H., 1997. Freshwater algae in Australia. Sainty and associated, Australia.
26
Stenseth, N.C.; Ottersen, G.; Hurrel, J.W. and Belgrano, A., 2004. Marine ecosystems and climate variation. Oxford University Press, New York. 266 p.
27
Stevenson RJ., 1997. Scale-dependent determinants and consequences of benthic algal heterogeneity. J. North Am. Benthol. Vol. 16, pp: 248-262.
28
Svane, I.; Cheshire, A. and Barnett, J., 2006. Test of an antifouling treatment on tuna fish cages in Boston Bay, Port Lincoln, South Australia. Biofouling. Vol. 22, No. 4, pp: 209-219.
29
Ter Braak, C.J.F., 1988. CANOCO- a FORTRAN Program for Canonical Community Ordination by Partial, Detrended, Canonical, Correspondence Analysis (Version 2.0). TNO Institute of Applied Computer Scince, Wageningen.
30
Ter Braak, C.J.F. and Smilauer, P., 1998. CANOCO Reference manual and user’s guide to Canoco for Windows: Software for Canonical Community Ordination (version 4). Microcomputer Power, Ithaca.
31
Tian, Y.; Kidokoro, H.; Watanabe, T. and Iguchi, N., 2008. The late 1980s regime shift in the ecosystem of Tsushima Warm Current in the Japan/East Sea: evidence from historical data and possible mechanisms. Progressive in Oceanography. Vol. 77, pp:127-145.
32
Wetzel, R.G., 2001. limnology: lake and river Ecosystems 3 nd Ed. Academic Press, San Diego.
33
ORIGINAL_ARTICLE
استانداردسازی صید به ازاء واحد تلاش (CPUE) تون هوور (Thunnus tonggol) با استفاده از روش خطی عمومی (GLM) در صید گوشگیر آب های ایرانی دریای عمان
تون هوور (Thunnus tonggol) از گونه های تجاری و مهم سطح زی است که در آب های ساحلی گرمسیری و معتدله اقیانوس هند و آرام پراکنش دارد. هدف از این مطالعه بررسی شاخص فراوانی نسبی تون هوور در مدت ده سال صید (1386 تا 1395) و بررسی تاثیر سال، ماه، تناژ شناور و ارتفاع طاقه های تور گوشگیر بر صید به ازاء واحد تلاش صیادی CPUE این گونه در صید گوشگیر شناورهای سنتی از آب های ساحلی دریای عمان می باشد که با مدل خطی عمومی (GLM) استاندارد شدند. غالباً در ارزیابی ذخایر هنگامی که پارامترهای جمعیتی را در مورد یک جمعیت محاسبه می کنند، از صید به ازاء واحد تلاش استاندارد شده که به عنوان شاخص فراوانی نسبی سالیانه جمعیت در نظر گرفته می شود به عنوان یک ورودی مهم استفاده می شود. نتایج این مطالعه نشان داد از بین متغیرهای توضیحی استفاده شده در مدل خطی عمومی سال و ماه به طور معنی داری روی CPUE تون هوور اثرگذار بوده اند اما تأثیر افزایشی تناژ شناور و ارتفاع تورهای گوشگیر به هم متصل شده معنی دار نبوده است. شاخص فراوانی نسبی تون هوور از سال 1386 تا 1395 روند افزایشی به همراه یک اوج چشمگیر در سال 1392 داشت و این نشان می دهد با افزایش تلاش صیادی ظرفیت افزایش صید وجود دارد. صید به ازاء واحد تلاش استاندارد شده تون هوور یک گرایش شدید فصلی نشان داد به طوری که میزان صید در فصل گرم سال بیش تر بود. بررسی شاخص فراوانی نسبی ماهیانه نشان داد که بیش ترین نرخ صید تون هوور در ماه های اردیبهشت و خرداد انجام شده است.
http://www.aejournal.ir/article_120563_e68f78a002392eef14e9ca116b8371e1.pdf
2020-09-22
381
388
10.22034/aej.2020.120563
صید گوشگیر
تون هوور
CPUE استانداردشده
مدل خطی عمومی
سید حسام
کاظمی
hesam_pep@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
سید یوسف
پیغمبری
sypaighambari@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
پرویز
زارع
parvizzare58@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سعید
گرگین
sgorgin@gau.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
درویشی، م.؛ کی مرام، ف.؛ طالب زاده، س.ع. و بهزادی، س.، 1382. بررسی ذخائر پنج گونه از تون ماهیان در استان هرمزگان سال های 1376-77 و 78. موسسه تحقیقات شیلات ایران.06-0710321000-76.
1
شوقی، ح.، 1371. بررسی زیستی تون ماهیان. انتشارات زیستگاه تحقیقاتی آب های دور. 75 صفحه.
2
لایقی، ب.؛ قادر، س.؛ علی اکبری بیدختی، ع. و آزادی، م.، 1396. حساسیت سنجی شبیه سازی های مدل WRF به پارامترسازیهای فیزیکی در محدوده خلیج فارس و دریای عمان در زمان مونسون تابستانی. مجله ژئوفیزیک ایران. دوره 11، شماره 1، صفحات 1 تا 19.
3
Abear, S.M., 2009. Comparisons of Boosted Regression Tree, GLM and GAM peformance in the standardization of Yellowfin Tuna catch-rate data from the Gulf of Mexico Longline Fishery, Faculty of the Louisiana State University and Agricultural and Mechanical College.
4
Al-Siyabi, B.; Al-Kharusi, L.; Nishida, T. and Al-Busaidi, H., 2014. Standardization of Longtail Tuna (Thunnus tonggol) catch rates of drift gillnet fisheries in Sultanate of Oman. IOTC 2014-WPNT04-28.
5
Battaile, B.C. and Quinn, T.J., 2004. Catch per unit effort standardization of the eastern Bering Sea walleye Pollock (Theragra chalcogramma) fleet. Fisheries Research. Vol. 70, pp: 161-177.
6
Botsford, L.W.; Castilla, J.C. and Peterson, C.H., 1997. The management of fisheries and marine ecosystems. Science. Vol. 277, pp: 509-515.
7
Cao, J., Chen; X., Chen, Y.; Liu, B.; Ma, J. and Li, S., 2011. Generalized linear Bayesian models for standardizing CPUE: an application to a squid-jigging fishery in the northwest Pacific Ocean. Scientia Marina Vol. 75, pp: 679-689.
8
Collette, B.B., 2001. Scombridae. Tunas (also, Albacore, Bonitos, Mackerels, Seerfishes, and Wahoo). P3721-3756. In Carpenter, K.E. and Niem, V., (eds). FAO species identification guide for fishery purposes. The living marine resources of the western central Pasific. Vol 6. Bony fishes part4 (Labridae to Latimeriidae), estuarine crocodiles, FAO, Rome. Data Programme-SIDP, FAO FIGIS.
9
Collette, B.B.; Abdulghader, E.; Alam, S.; Alghawzi, Q.; Bishop, J.; Hartmann, S.; Kaymaram, F. and Smith Vaniz, W.F., 2015. Thunnus tonggol. The IUCN red list of threatened species 2015:e. T170351A57243599.http://www.iucnredlist.org/details/full/170351/26).
10
Darvishi, M.; Paighambari, S.Y.; Ghorbani, A.R. and Kaymaram, F., 2018. Population assessment and yield per recruit of Longtail Tuna (Thunnus tonggol) in Northern of the Persian Gulf and Oman Sea (Iran, Hormozgan Province). Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 17, No. 4, pp: 776-789. DOI: 10.22092/ijfs.2018.116992.
11
FAO. 1993. Fisheries Series No.40. Fisheries Statistics Series No. 111, 72 p.
12
Froese, R. and Pauly, D.E., 2018. FishBase. World Wide Web electronic publication. www.fishbase.org, version 09/2018.
13
Fu, D.; Nergi, S.K. and Rajaei, F., 2019. CPUE Standardizations for Neritic Tuna Species Using Iranian Gillnet Data 2008-2017. IOTC-2019-WPNT-17.
14
Glazer, J.P. and Butterworth, D.S., 2002. GLM-based standardization of the catch per unit effort series for South African west coast hake, focusing on adjustments for targeting other species. South African Journal of Marine Science. Vol. 24, pp: 323-339.
15
Griffiths, S.P., 2010. Stock assessment and efficacy of size limits on Longtail Tuna (Thunnus tonggol) caught in Australian waters. Fisheries Research. Vol. 102, pp: 248-257.
16
Gulland, J.A., 1983. Fish Stock Assessment: A Manual of Basic Methods. (Wily: New York).
17
Hilborn, R. and Walters, C.J., 1992. Quantitative Fisheries Stock Assessment: Choice, Dynamics and Uncertainly. Chapman and Hall, New York. 570 p.
18
Hinton, M.G. and Maunder, M.N., 2004. Methods for standardizing CPUE how to select among them. Col. Vol. Sci. Pap. ICCAT. Vol. 56, No. 1, pp: 169-177.
19
IFO. 2016. Iran (Islamic Republic of) National Report to the Scientific committee of the Indian Ocean Tuna Commission, 2016. IOTC-2016-SC19-NR11. 22 p.
20
IOTC Sectariat. 2017. Assessment of Indian Ocean Longtail Tuna (Thunnus tonggol) using data limited methods. IOTC-2017-WPNT07-15 Rev_1.
21
IUCN. 2015. IUCN red list of threatened species (ver. 2017.2). Available at: http://www.iucnredlist.org.
22
Khorshidi Nergi, S., 2014. A Review of Iran Fisheries data and statistics with emphasis tuna fishes. IOTC-2014 WPDCS10-12 Rev_2.
23
Kumari, B.; Raman, M.; Narain, A. and Sivaprakasam, T.E., 1993. Satelitte remote sensing for tuna fishing in Indian waters. In: Sudarsan, D. and John, M. E. (Eds.). Tuna research in India. pp: 157-166.
24
Maunder, M.N. and Punt, A.E., 2004. Standardizing catch and effort data: a review of recent approaches. Fisheries Research. Vol. 70, pp: 141-159.
25
Mohri, M. and Kajikawa, Y., 2014. Ecology of bluefin tuna and longtail tuna in the Sea of Japan based on mathematical and physical fisheries science consideration using chi-square test, cluster analysis, and linear discriminant analysis. Mathematical and Physical Fisheries Science. Vol. 11, pp: 22-43.
26
Naderi, R.A., 2017. Importance of Neritic Tuna catch in I.R. Iran capture fishery. IOTC-2017 WPNT07-09.
27
Nelder, J.A. and Wedderburn, R.W.M., 1972. Generalized linear models. Journal of Royal Statistical Society Series A. Vol. 137, pp: 370-384.
28
Nishida, T. and Chen, D.G., 2004. Incorporating spatial autocorrelation into the general linear model with an application to the Yellowfin Tuna (Thunnus albacares) Longline CPUE data. Fisheries Research. Vol. 70, pp: 265-274.
29
Parsapoor, R., 2013. Persian Gulf Science and Technology Park. http://www.pgstp.ir/uploads/PGSTP_English trans-1.png.
30
Pierre, L.; Geehan, J. and Herrera, M., 2014. Review of the statistical data available for bycatch species. IOTC-2014 WPNT04-07. Rev_1. pp: 17-19.
31
Pillai, N.G. and Satheeshkumar, P., 2012. Biology, Fishery, Conservation and Management of Indian Ocean Tuna Fisheries. Ocean Science Journal. Vol. 47, No. 4, pp: 411-433. DOI: 10.1007/s12601-012-0038-y.
32
Shih, C.L.; Chou, S.C.; Wang, H.Y. and Hsu, C.C., 2014. Trial estimation of standardized catch per unit effort of Yellowfin Tuna by the Taiwanese Longline Fishery in the tropical waters of the Atlantic Ocean. ICCAT. Vol. 70, No. 6, pp: 2738-2762.
33
Venables, W.N. and Dichmont, C.M., 2004. GLMs, GAMs and GLMM: an overview of theory for applications in fisheries research. Fisheries Research. Vol. 70, pp: 319-337.
34
Yesaki, M., 1994. A review of the biology and fisheries for Longtail Tuna (Thunnus tonggol) in the Indo-Pacific region. FAO Fisheries Technical paper. Vol. 336, pp: 370-387.
35
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی میزان غلظت کل هیدروکربن های نفتی و فلزات سنگین (سرب و کادمیوم) در پساب های نفتی استان گلستان
در این پژوهش آلودگی هیدروکربن های نفتی و فلزات سینگین (سرب ، کادمیوم) در پساب مخازن نفتی شرکت نفت استان گلستان بررسی شد. تعداد سه ایستگاه در محل خروجی پساب شرکت نفت احداث شد. برای هر ایستگاه تعداد 20 دوکفه ای دربسکت نت در نظر گرفته شد. برای سنجش میزان فلزات کادمیوم و سرب از دستگاه جذب اتمی و برای سنجش کل هیدروکربن های نفتی از دستگاه GC- Mass استفاده گردید. نتایج نشان می دهد که میانگین سالانه غلظت کل هیدروکربن نفتی به میـزان 2/94 میلی گرم بر لیتر بوده و بیش ترین غلظت مواد نفتی در فصل بهار به میزان 20/1 میلی گرم بر لیتردر ایستگاه اول اندازه گیری شد که چند برابر بالاتر از استاندارد جهانی است و کم ترین غلظت مواد نفتی در فصل پاییز به میزان 0/01 میلی گرم بر لیتر اندازه گیری شده است. میانگین سالانه غلظت فلزات سنگین در ایستگاه اول برای کادمیوم در بهار، تابستان، پاییز و زمستان برابر با 0/750، 0/563، 0/365 و 0/279، در ایستگاه دوم غلظت کادمیوم در بهار، تابستان، پاییز و زمستان برابر با 0/534، 0/461، 0/332 و 0/215 و در ایستگاه سوم میزان کادمیوم 0/317، 0/284، 0/192 و 0/179 اندازه گیری شد. هم چنین میزان میانگین غلظت سرب در بهار، تابستان، پاییز و زمستان به ترتیب برابر با 0/860، 0/721، 0/383 و 0/217، در ایستگاه دوم غلظت سرب در بهار، تابستان، پاییز و زمستان برابر با 0/644، 0/677، 0/367 و 0/211 و در ایستگاه سوم میزان سرب 0/392، 0/436، 0/342 و 0/194 ثبت گردید.
http://www.aejournal.ir/article_120610_0493b3dff0e6c671bd14359a6d5bf6b8.pdf
2020-09-22
389
394
10.22034/aej.2020.120610
هیدروکربن های نفتی
سرب و کادمیوم
فاطمه
بهاروند
ffatemb@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده محیط زیست، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
AUTHOR
جواد
وروانی
varvanii_55@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده محیط زیست، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
LEAD_AUTHOR
حمید
ترنج زر
h.torangzarr@yahoo.com
3
گروه محیط زیست، دانشکده محیط زیست، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
AUTHOR
علی اکبر
هدایتی
hedayati2@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیطزیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
عباس
احمدی
a.ahmadi@yahoo.com
5
گروه منابع طبیعی، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
AUTHOR
بذرافشان، ع.، 1374. بررسی پارامترهای فیزیکی و شیمیایی و آلودگی های نفتی در بخش شرقی دریای خزر (قبل از حفاری چاه های نفت). پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد تهران شمال.
1
حسینی ضیابری، ا.، 1389. بررسی کیفی هیدروکربن های نفتی (PAH ) در آب اسکله صیادی تجاری بندرانزلی. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه آزاد اسلامی، واحد تهران شمال. 150 صفحه.
2
خداپرست،ح.، 1390. بررسی هیدروکروبورهای نفتی و فلزات سنگین (طرح جامع شیلاتی تالاب انزلی) مورد بررسی و تعیین نمود. پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی کشور. بندر انزلی.
3
خداپرست، ح.، 1396. بررسی هیدروکروبورهای نفتی در محل شناورها در مصب تالاب انزلی و سواحل دریای خزر (حوزه گیلان). اداره کل محیط زیست استان گیلان. 89 صفحه.
4
نصراالله زاده، ح. و ملکی شمالی، م.، 1396. روند آلودگی هیدروکربورهای نفتی در بنادر مهم جنوب دریای خزر. مرکز تحقیقات گیلان. مقالات کاسپرنیخ آستاراخان 2002.
5
APHA (American Public Health Association. 1998. Standard methods for examination of water and wastewater. pp: 150-346.
6
Askari, M., 2003. Monitoring of environmental heavy metals in fish from Nasser Lake. Environmental Inter national. pp: 27-33.
7
Ekimea, D.; Ebrahimi, M.; Nysten, K.; Roelants, I.; Rurangwa, E.;Moore, H.D.M. and Ollevierb, F., 1996. Use of computer assisted sperm analysis (CASA) for monitoring the effects of pollution on sperm quality of fish; application to the effects of heavy metals. Vol. 36, No. 3-4, pp: 223-237.
8
EPA. 2000. Equilibrium, Partitioning Sediment Guidelines (ESGs) for the Protection of Benthic Organisms: PAH Mixtures. US Environmental Protection Agency, Office of Water. Office of Science and Technology. Office of Research and Development. Washington. DC.
9
Fuhrer, G.J.; Stuart, D.J.; Mckenzie, W.; Rinellaj, F.; Cranwford, J.K. and Hornlorer, M.I., 1996. Spetial and temporal distribution of trace element in water sediment and aquatic biota, U.S. Geological survey Portland. 190 p.
10
Han, L.; Chen, L.; Hao, J. and Zhong, N., 2009. Bioaccumulation and sub-acute toxicity of zinc oxide nanoparticles in juvenile carp (Cyprinus carpio): A comparative study with its bulk counterparts. Ecotoxicology and Environmental Safety. Elsevier Inc. pp: 9152-9160.
11
Kazemi, S.; Boroomand-Nassab, S. and Izadpanah, Z., 2019. Technical Evaluation of Classic Stationary Sprinkler Irrigation Systems with Travelling Sprinklers in Eghlid, Fars Province. Vol. 42, No. 2, pp: 181-196.
12
Kriipsalu, M. and Nammari, D., 2010. Monitoring of biopile composting of oily sludge. Waste Management and Research. Vol. 28, pp: 395-403.
13
Neff, J.M., 1979. Polycyclic Aromatic Hydrocarbons in the Aquatic Environment: source, Fates and Biological Effects, Applied Science, London.
14
Pena, T.; Pensado, L.; Casais, C.; Mejuto, C.; Phan-Tan Luu, R. and Cela, R., 2006. Optimization of a microwave assisted extraction method for the analysis of polycyclic aromatic hydrocarbons from fish samples. Journal of chromatography. Vol. 1121, No. 2, pp: 163-169.
15
Puplic Health Service. 1996. Puplic Health Service Drinking Water Standards, U.S.
16
Rashed, M., 2001. Monitoring of environmental heavy metals in fish from Nasser Lake. Environmental Inter national. pp: 27-33.
17
Thabat, O.H.V. and Weber, H.H., 2013. Marin Biology. Charlos. E. Merali publishing company Abell and Howel company, colombus. Ohio 43216. pp: 385-395.
18
WHO. 1984. Gide line for drinnig water Quality.Vol. 2, 254 p.
19
ORIGINAL_ARTICLE
اثر غلظت های تحت کشنده دیازینون بر بیان ژن آروماتاز (cyp19a) در جنس ماده ماهی گورخری (Danio rerio)
سم دیازینون یک سم پرکاربرد در کشاورزی است و می تواند به عنوان یک خطر برای تولیدمثل آبزیان به شمار می آید. در این تحقیق تأثیر دوزهای تحت کشنده سم دیازینون بر بیان ژن آروماتاز (Cyp19a) درجنس ماده ماهی گورخری (Danio rerio) بررسی شد. بدین منظور 600 قطعه بچه ماهی گورخری با میانگین وزنی 0/01±0/15 گرم در قالب 4 گروه آزمایشی (یک گروه شاهد و 3 تیمار با 3 تکرار) به مدت یک ماه در مواجه با غلظت های 0/8، 1/6 و 3/2 میلی گرم بر لیتر سم دیازینون قرار گرفتند. در انتهای دوره از بافت گناد نمونه برداری و استخراج RNA انجام شد. برای سنتز cDNA از کیت Superscript RTase استفاده شد و cDNA حاصله با استفاده از پرایمرهای ژن آروماتاز و ژن بتا اکتین بهعنوان ژن رفرنس در Real Time PCR مورد بررسی قرار گرفت. ارزیابی بیان ژن آروماتاز در تیمارهای 0/8، 1/6 و 3/2 میلی گرم بر لیتر سم دیازینون الگوی کاهشی وابسته به دوز را نشان داد و میزان بیان ژن آروماتاز به ترتیب 0/98، 0/90 و 0/70 برابر گروه شاهد بود، اما این کاهش معنی دار نبود. نتایج مطالعه حاضر نشان می دهد که سم دیازینون می تواند اثر منفی بر تکامل رسیدگی جنسی در جنس ماده ماهی زبرا داشته باشد.
http://www.aejournal.ir/article_120810_c74e93bce665a6d5db64b7fd8598dc63.pdf
2020-09-22
395
400
10.22034/aej.2020.120810
دیازینون
آروماتاز
بیان ژن
ماهی زبرا
معصومه
درویشی
m_darvishi_m71@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
رقیه
صفری
fisheriessafari@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
علی
شعبانی
shabani@gau.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سید حسین
حسینی فر
hoseinifar@gau.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
درویشی، م. و صفری، ر.، ۱۳۹۷. ماهی گورخری (Danio rerio) به عنوان مدل ژنوتوکسیکولوژی. مجله آبزیان زینتی. سال ۵، شماره ۴، صفحات ۲۳ تا ۳۴.
1
Baatrup, E. and Henriksen, P.G., 2015. Disrupted reproductive behavior in unexposed female zebrafish (Danio rerio) paired with males exposed to low concentrations of 17α-ethinylestradiol. Aqua Toxico. Vol. 160, pp: 197-204.
2
Barney, M.L.; Patil, J.G.; GunasekERα, R.M. and Carter, C.G., 2008. Distinct cytochrome P450 aromatase isoforms in the common carp (Cyprinus carpio): sexual dimorphism and onset of ontogenic expression. GenERαl and Compar Endocri. Vol. 156, No. 3, pp: 499-508.
3
Carreau, S.; Bourguiba, S.; Lambard, S.; GalERαud Denis, I.; Genissel, C. and Levallet, J., 2002. Reproductive system: aromatase and estrogens. Molecul and Cellul Endocri. Vol. 193, No. 1-2, pp: 137-143.
4
Chen, M.; Zhang, J.; Pang, S.; Wang, C.; Wang, L.; Sun, Y. and Liang, Y., 2018. Evaluating estrogenic and anti-estrogenic effect of endocrine disrupting chemicals (EDCs) by zebrafish embryo-based vitellogenin 1 (vtg1) mRNA expression. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology. Vol. 204, pp: 45-50.
5
Chen, Y.Y. and Chan, K.M., 2016. Regulation of vitellogenin (vtg1) and estrogen receptor (er) gene expression in zebrafish (Danio rerio) following the administration of Cd2+ and 2, 3, 7, 8-tetrachlorodibenzo-p-dioxin (TCDD). Chemosphere. Vol. 147, pp: 467-476.
6
Devlin, R.H. and Nagahama, Y., 2002. Sex determination and sex differentiation in fish: an overview of genetic, physiological, and environmental influences. Aqua. Vol. 208, No. 3-4, pp: 191-364.
7
Di Giulio, R.T. and Hinton, D.E., 2008. The Toxicology of Fishes. Taylor & Francis Group pp:1101.
8
Dong, M.; Zhu, L.; Shao, B.; Zhu, S.; Wang, J.; Xie, H. and Wang, F., 2013. The effects of endosulfan on cytochrome P450 enzymes & glutathione S-trans fERαses in zebrafish livers. Ecotoxi and Environ Safe. Vol. 92, pp: 1-9.
9
Dutta, H.M. and Arends, D., 2003. Effects of endosulfan on brain acetylcholinestERαse actiVtgy in juvenile bluegill sunfish. Environ Research. Vol. 91, No. 3, pp: 157-162.
10
Eisler, R., 1986. Diazinon hazards to fish, wildlife, and invertebrates: A Synoptic review. Fish & Wildl Service. 85 p.
11
Faheem, M.; Khaliq, S. and Lone, K.P., 2017. Disruption of the Reproductive Axis in Freshwater Fish, Catla catla, After Bisphenol-A Exposure. Zoological Science. Vol. 34, No. 5, pp: 438-444.
12
Fenske, M. and Segner, H., 2004. Aromatase modulation alters gonadal differentiation in developing zebrafish (Danio rerio). Aquatic Toxico. Vol. 67, No. 2, pp: 105-126.
13
Fernandino, J.; Hattori, R., Shinoda, T.; Kimura, H.; Strobl-Mazzulla, P.; Strüssmann, C. and Somoza, G., 2008. Dimorphic expression of dmrt1 and cyp19a1 during early gonadal development in pejerrey, Odontesthes bonariensis. Sexual Develop. Vol. 2, No. 6, pp: 316-324.
14
Filby, A.L. and Tyler, C.R., 2005. Molecular characterization of estrogen receptors 1, 2a, and 2b and their tissue and ontogenic expression profiles in fathead minnow. Biol Reprod. Vol. 73, No. 4, pp: 648-662.
15
Gustafsson, J.A., 2003. What pharmacologists can learn from recent advances in estrogen 400 ignaling. Trends Pharmacol Sci. Vol. 24, No. 9, pp: 479-485.
16
Hinfray, N.; Baudiffier, D.; Leal, M.C.; Porcher, J.M.; Aït-Aïssa, S.; Le Gac, F.; Schulz, R.W. and Brion, F., 2011. Characterization of testicular expression of P450 17α-hydroxylase, 17,20-lyase in zebrafish and its perturbation by the pharmaceutical fungicide clotrimazole. GenERαl and Compar Endocri. Vol. 174, No. 3, pp: 309-317.
17
Hinfray, N.; Palluel, O.; Turies, C.; Cousin, C.; Porcher, J.M. and Brion, F., 2006. Brain and gonadal aromatase as potential targets of endocrine disrupting chemicals in a model species, the zebrafish (Danio rerio). Environ Toxico. Vol. 21, No. 4, pp: 332-337.
18
Husoy, A.M.; Myers, M.S. and Goksoyr, A., 1996. Cellular localization of cytochrome P450 (CYPlA) induction and histology in Atlantic cod (Gadus morhua L) and European flounder (Platichthys flesus) after environmental exposure to contaminants by caging in Sarrfiorden, Norway. Aqua Toxico. Vol. 36, No. 1-2, pp: 53-74.
19
Hwang, D.S.; Lee, K.W.; Han, J.; Park, H.G.; Lee, J.; Lee, Y.M. and Lee, J.S., 2010. Molecular characterization and expression of vitellogenin (Vg) genes from the cyclopoid copepod, Paracyclopina nana exposed to heavy metals. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology. Vol. 151, No. 3, pp: 360-368.
20
Jobling, S.; Williams, R.; Johnson, A.; Taylor, A.; Gross Sorokin, M.; Nolan, M.; Tyler, C.R.; van Aerle, R.; Santos, E. and Brighty, G., 2006. Predicted exposures to steroid estrogens in U.K. rivers correlate with widespread sexual disruption in wild fish populations. Environ Health Perspect. Vol. 114, No. (Suppl 1), pp:32-39.
21
Kim, S.; Jung, D.; Kho, Y. and Choi, K., 2014. Effects of benzophenone-3 exposure on endocrine disruption and reproduction of Japanese medaka -A two genERαtion exposure study. Aqua Toxico. Vol. 155, pp: 244-252.
22
Kwon, B.; Ha, N.; Jung, J.; Kim, P.G.; Kho, Y.; Choi, K. and Ji, K., 2016. Effects of Barium Chloride Exposure on Hormones and Genes of the Hypothalamic-Pituitary-Gonad Axis, and Reproduction of Zebrafish (Danio rerio). Bull of Environ Contamin and Toxico. Vol. 96, No. 3, pp: 341-346.
23
Larkin, P.; Knoebl, I. and Denslow, N.D., 2003. Differential gene expression analysis in fish exposed to endocrine disrupting compounds. Compar Biochem and Physio. Vol. 136, No. 2, pp: 149-161.
24
Lee, J.; Park, N.Y.; Kho, Y. and Ji, K., 2018. Effects of 4 Hydroxyphenyl 4-Isoprooxyphenyl sulfone Exposure on Reproduction and Endocrine System of Zebrafish. Environ Sci & Techno. Vol. 52, No. 3, pp: 1506-1513.
25
Liley, N.R. and Stacey, N.E., 1983. Hormones, pheromones, & reproductive behavior in fish. Fish Physio. Vol. 9, pp: 1-63.
26
Livak, K.J. and Schmittgen, T.D., 2001. Analysis of relative gene expression data using real time quantitative PCR & the method. Methods. Vol. 25, No. 4, pp: 402-408.
27
McKinlay, R.; plant, J.A.; Bell, J.N.B. and Voulvoulis, N., 2008. Endocrine disrupting pesticides: Implications for risk assessment. Environmental International. Vol. 34, No. 2, pp :168-183.
28
Mills, L. and Chichester, C., 2005. Review of evidence: are endocrine-disrupting chemicals in the aquatic environment impacting fish populations? Sci of the Total Enviro. Vol. 343, No. 1-3, pp: 1-34.
29
Srivastava, A.K.; Mirshra, D.; Shrivastava, S.; Srivastav, S.k. and Srivastav, A.A., 2010. Acute toxicity and behavioural responses of Heteropneutes fossilis to an organophosphate insecticide, dimethoate. Inter Journal of Pharma and Bio Sci. Vol. 1, No. 4, pp: 359-363.
30
Teng, M.; Qi, S.; Zhu, W.; Wang, Y.; Wang, D.; Dong, K. and Wang, C., 2018. Effects of the bioconcentration and parental transfer of environmentally relevant concentrations of difenoconazole on endocrine disruption in zebrafish (Danio rerio). Environ Poll. Vol. 233, pp: 208-217.
31
Trant, J.M.; Gavasso, S.; Ackers, J.; Chung, B.C. and Place, A.R., 2001. Developmental expression of cytochrome P450 aromatase genes (CYP19a and CYP19b) in zebrafish fry (Danio rerio). Journal of Experimental Zoology Part A: Eco Gene and Physio. Vol. 290, No. 5, pp: 475-483.
32
Trickler, W.J.; Guo, X.; Cuevas, E.; Ali, S.F.; Paule, M.G. and Kanungo, J., 2014. Ketamine attenuates cytochrome p450 aromatase gene expression and estradiol‐17β levels in zebrafish early life stages. Journal of Appli Toxico. Vol. 34, No. 5, pp:480-488.
33
Uchida, D.; Yamashita, M.; Kitano, T. and Iguchi, T., 2004. An aromatase inhibitor or high water tempERαture induce oocyte apoptosis and depletion of P450 aromatase actiVtgy in the gonads of genetic female zebrafish during sex reversal. Compar Biochem and Physio Part A: Molecu & Inte Physio. Vol. 137, No. 1, pp: 11-20.
34
Yu, L.; Liu, C.; Chen, Q. and Zhou, B., 2014. Endocrine disruption and reproduction impairment in zebrafish after long‐term exposure to DE‐71. Environ Toxico and Chem. Vol. 33, No. 6, pp: 1354-1362.
35
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تأثیر رنگ، ارتفاع و نوع تله فرمونی بر شکار شب پره مینوز گوجه فرنگی Tuta absoluta (Lepidoptera: Gelechiidae) در استان فارس
مینوز گوجه فرنگی Tuta absoluta (Meyrick, 1917) (Lepidoptera: Gelechiidae) از آفات مهم گوجه فرنگی بوده و خسارت زیادی به این محصول وارد می آورد. در تحقیق حاضر، برخی عوامل مؤثر بر میزان شکار مینوز گوجه فرنگی با استفاده از تله فرومونی بررسی شد. آزمایش به صورت فاکتوریل در قالب طرح کاملاً تصادفی در سه تکرار طی سال های 1396 و 1397 انجام شد. فاکتورها شامل نوع تله (دلتا و بالی شکل)، رنگ تله (آبی و سفید) و ارتفاع تله (80،50،20 سانتی متر) بود. با توجه به نتایج به دست آمده میانگین شکار مینوزها در تله ها با رنگ ها و ارتفاع مختلف با احتمال خطای 1% و در انواع تله های مورد استفاده در سطح 5% اختلاف معنی دار نشان داد. تله سفید با میانگین شکار 1355/9 حشره نسبت به تله آبی کارایی مؤثرتری داشت. تله های با ارتفاع 80 سانتی متر با میانگین شکار 1716/4 ارتفاع، شبپره های بیش تری را شکار کردند و تله های دلتا نیز کارایی بهتری نسبت به بالی شکل داشتند. اثر متقابل سال، رنگ تله و ارتفاع تله؛ ارتفاع تله، نوع تله؛ و رنگ تله، ارتفاع تله، نوع تله با احتمال خطای 1% و اثر متقابل ارتفاع تله، رنگ تله با احتمال خطای 5% بر روی شکار مینوز معنی دار شد. تله دلتا سفید در ارتفاع 50 و80 سانتی متر به ترتیب با میانگین شکار 2863/3 و 1137/8 و تله بالی سفید در ارتفاع 20 سانتی متر با میانگین شکار 962/8 بیش ترین میزان شکار را داشتند. کم ترین میانگین شکار نیز مربوط به تله بالی شکل آبی در ارتفاع 20 سانتی متر مینوز بود. با توجه به نتایج این بررسی، تله فرومونی سفید دلتایی با ارتفاع نصب 80 سانتی متر بیش ترین کارایی را در کنترل مینوز گوجه فرنگی دارد.
http://www.aejournal.ir/article_120829_cf6e0a03a60b4475b2c6c7f913a26b53.pdf
2020-09-22
401
408
10.22034/aej.2020.120829
تله فرومونی
تله بالی شکل
تله دلتا
مینوز گوجه فرنگی
Tuta absoluta
مریم
معرفی
maryam.moarefi@gmail.com
1
گروه اصلاح نباتات، واحد کرج، دانشگاه آزاد اسلامی، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
علی
همراهی
2
گروه گیاه پزشکی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه زنجان، زنجان، ایران
AUTHOR
کبری
فتوحی
3
گروه گیاه پزشکی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
آمارنامه کشاورزی وزارت جهادکشاورزی.95-1394. محصولات زراعی، جلد اول، معاونت برنامه ریزی و اقتصادی مرکز فناوری اطلاعات و ارتباطات. 125 صفحه.
1
رزمجو، م. و افتخاری، پ.، 1396. ارزیابی تأثیر رنگ و ارتفاع تله فرمونی دلتا در میزان شکار مینوز گوجه فرنگی به منظور پایش آفت Tuta absoluta (Lepidoptera: Gelechiidae. هفتمین همایش ملی ایده های نو در کشاورزی با رویکرد تولید محصولات سالم. اصفهان، دانشگاه آزاد اسلامی واحد اصفهان، 5 اسفند، صفحات 1 تا 5.
2
سالاری، ع.؛ فلاح زاده، م. و تبریزیان، م.،1390. برخی عوامل مؤثر در کارایی تله های فرمونی پروانه کرم آلو Grapholita funebrana (Lepidoptera: Tortricidae) در استان فارس. فصلنامه گیاه پزشکی. دوره 2، شماره 3، صفحات 99 تا 109.
3
طالبی، ع.ا.؛ جریانی، ر. و اللهیاری، ح.، 1393. ویژگی هایی از زیست شناسی کفشدوزک ippodamia variegata Coccinellidae روی سه گونه شته غلات. پژوهش های جانوری (مجله زیست شناسی ایران). دوره 27، شماره 2، صفحات 260 تا 269.
4
عسگری، ح.؛ آل منصور، ح.؛ زرگران، م.ر. و قاضی، م.، 1391. بررسی اثر رنگ تله فرمونی و محل نصب آن در میزان شکار جوانه خوار بلوط Tortrix viridana در سه استان کشور. تحقیقات حمایت و حفاظت جنگل ها و مراتع ایران. دوره 10، شماره 1، صفحات 1 تا 9.
5
عسگری، ح.؛ زرگران، م.ر.؛ آل منصور، ح.؛ قاضی، م.؛ بریمانی، م.ح.؛ تبریزیان، م. و عجم حسنی، م.، 1388. بررسی اثر شکل تله و پخش کننده فرمون جنسی در شکار پروانه های نر جوانه خوار بلوط Tortrix viridana Lep.: Tortricidae. آفات و بیماری های گیاهی، ویژه نامه آفت کش ها. دوره 77، شماره 33 تا 50.
6
غباری، ح.؛ گلدان ساز، س.ح. و عسگری، ح.، 1388. برخی عوامل مؤثر در شکار تله های فرمونی پروانه جوانه خوار بلوط Tortrix viridana Lep.: Tortricidae در استان کردستان. علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی. دوره 47، شماره 13، صفحات 255 تا 262.
7
کرمانی، پ.؛ فرزامند، ح.؛ کریم زاده، ج. و آوندفقیه، آ.، 1393. مطالعات نوسانات جمعیت کرم به Euzophera bigella Zeller و کرم سیب Cydia pomonella L. در باغ های به اصفهان. تحقیقات حشره شناسی. دوره 5، شماره 2، صفحات 161 تا 171.
8
ناصریان، ن.؛ فرازمند، ح.؛ آوندفقیه، آ. و وفایی شوشتری، ر.، 1395. مطالعه عوامل مؤثر در شکار تله های فرمونی کرم گلوگاه انار Ectomyelois ceratoniae. حفاظت گیاهان (علوم و صنایع کشاورزی). دوره 30، شماره 3، صفحات 481 تا 487.
9
Abbes, K. and Chermiti, B., 2011. Comparison of two marks of sex pheromone dispensers commercialized in Tunisia for their efficiency to monitor and to control by mass trapping Tuta absoluta under greenhouses. Tunisian Journal of Plant Protection. Vol. 6, No. 2, pp: 133-148.
10
Ahmed, T.R. and Khadhum, A.A., 1986. Influence of pheromone trap design and placement on capture of peach twig borer, Anarsia lineatella. International Journal of Tropical Insect Science. Vol. 7, No. 5, pp: 637-640.
11
Alan, L.K. and Douglas, M.L., 2005. Factors affecting the differential capture of male and female codling moth in traps baited with Ethyl (E, Z)-2, 4-decadionate. Environmental Entomology. Vol. 34, No. 5, pp: 1161-1169.
12
Arsura, E.; Capizzi, A.; Piccardi, P. and Spinelli, P., 1980. Some factors influencing the performance of pheromone trap for Codling moth, Oriental fruit moth and the two European grape vine moth species in Italy. Bollettino di Zoologia Agraria e di Bachicoltura. Vol. 11, pp: 15-28.
13
Athanassiou, C.G.; Kavallieratos, N.G. and Mazomenos, B.E., 2004. Effect of trap type, trap color, trapping location, and pheromone dispenser on captures of male Palpita unionalis (Lepidoptera: Pyralidae). Journal of Economic Entomology. Vol. 97, No. 2, pp: 321-329.
14
Baniameri.V. and Cheraghian, A., 2012. The first report and control strategies of Tuta absoluta in Iran. EPPO bulletin. Vol. 42, pp: 322- 324.
15
Berxolli, A. and Shahini, Sh., 2017. Population dynamic of tomato leaf miner, Tuta absoluta. Albanian Journal of Agricultural Sciences (Spetial edition). pp: 85-89.
16
Braham, M., 2014. Sex Pheromone Traps for Monitoring the Tomato Leafminer, Tuta absoluta: Effect of Colored Traps and Field Weathering of Lure on Male Captures. Research Journal of Agriculture and Environmental Management. Vol. 3, No. 6. pp: 290-298.
17
Branco, M.C.; França, F.H.; Medeiros, M.A. and Leall, J.G.T., 2001. Use of insecticides for controlling the South Americana tomato pinworm and the diamondback moth: a case study. Horticulture Brasileria. Vol. 19, No. 1, pp: 60-66.
18
Cork, A.; Alam, S.N.; Rouf, F.M. and Taleker, N.S., 2003. Female sex pheromone of brinjal fruit and shoot borer, Leucinodes orbonalis (Lepidoptera: Pyralidae): trap optimization and application in IPM trials. Bulletin of Entomological Research. Vol. 93, No. 2, pp: 107-113.
19
Desneux, N.; Decourtye, A. and Delpuech, J.M., 2007. The sublethal effects of pesticides on beneficial arthropods. Annual Review of Entomology. Vol. 52, pp: 81-106.
20
Desneux, N.; Luna, M.G.; Guillemaud, T. and Urbaneja, A., 2011. The invasive South American tomato pinworm, Tuta absoluta, continues to spread in Afro-Eurasia and beyond: the new threat to tomato world production. Journal of Pest Science, Vol. 84, No. 4, pp: 403-408.
21
Desneux, N.; Wajnberg, E.; Wyckhuys, K.A.G.; Burgio, G.; Arpaia, S.; NarváezVasquez, C.A.; González Cabrera, J.; Catalán Ruescas, D.; Tabone, E.; Frandon, J.; Pizzol, J.; Poncet, C.; Cabello, T. and Urbaneja, A., 2010. Biological invasion of European tomato crops by Tuta absoluta: ecology, history of invasion and prospects for biological control. J of Pest Scienc. Vol. 83, pp: 197-215.
22
Edi, A.M.; Bahena, F., Miranda, M.A. and Valle-Mora, J., 2004. Factors affecting the trapping of males of Spodoptera frugipedra with pheromones in Mexico. Florida Entomologist. Vol. 87, No. 3, pp: 288-293.
23
Hassan, N. and Al-Zaidi, S., 2010. Tuta absoluta pheromone mediated management strategy. International Pest Control. Vol. 52, No. 3, pp: 158-160.
24
Knight, A.L. and Miliczky, E., 2003. Influence of Trap Color on the Capture of Codling Moth, Honeybees, and Non target Flies. Journal of the Entomological Society of British Columbia, Vol. 100, pp: 65-70.
25
Mahmoud, Y.A.; Ebadah, I.M.A; Abd-Elrazik, A.S; Abd Elwahab, T.E. and Deif, S.H., 2014. Efficiency of Different Colored Traps Baited with Pheromone in Capturing Tomato Adult Moth, Tuta absoluta during Summer Plantation. World Applied Sciences Journal. Vol. 30, No. 4, pp: 406-412.
26
Megido, R.C.; Haubruge, E. and Verheggen, F., 2013. Pheromone-based management strategies to control the tomato leafminer, Tuta absoluta (Lepidoptera: Gelechiidae), A review Biotechnology, Agronomy and Society and Environment. Vol. 17, No. 3, pp: 475-482.
27
OEPP/EPPO. 2008. First report of Tuta absoluta in Spain. EPPO Reporting Service No. 1.
28
Prasad, Y. and Prabhakar, M., 2012. Pest monitoring and forecasting. In: Integrated pest management: principles and practice. Edited by Shankar, U. and Abrol, D.P. Oxfordshire, UK: Cabi. pp: 41-57.
29
Riedl, H.; Hoying, S.A.; Barnett, W.W. and DeTer, J.E., 1979. Relationship of within-tree placement of the pheromone trap to codling moth catches. Environmental Entomology. Vol. 8, pp: 765-769.
30
Roubos, C.R. and Liburd, O.E., 2008. Effect of Trap Color on Captures of Grape Root Borer (Lepidoptera: Sesiidae) Males and Non-Target Insects. Journal of Agricultural and Urban Entomology. Vol. 25, No. 2, pp: 99-109.
31
Sabbour, M., 2014. Biocontrol of the Tomato Pinworm Tuta absoluta in Egypt. Middle East Journal of Agriculture Research. Vol. 3, No. 3, pp: 499-503.
32
SAS Institute Inc. 2013. SAS® 9.4 Statements: Reference. Cary, NC: SAS Institute Inc. 476 p.
33
Taha, A.M.; Homam, B.H.; Afsah, A.F.E. and EL Shrkawy, F., 2013. Effect of trap color on captures of Tuta absoluta moths. International Journal of Environmental Science and Engineering. Vol. 3, pp: 43-48.
34
Timmons, G.M. and Potter, D.A., 1981. Influence of pheromone trap color on capture of lilac borer males. Environmental Entomology. Vol. 10, No. 5, pp:756-759.
35
Tirindelli, R.; Dibattista, M.; Pifferi, S. and Menini, A., 2009. From pheromones to behaviour. Physiological Reviews. Vol. 89, No. 3, pp: 921-956.
36
Uchôa-Fernandes, M.A. and Vilela, E.F., 1994. Field trapping of the tomato worm, Scrobipalpuloides absoluta using virgin females. Anais da Sociedade Entomológica do Brasil. Vol. 23, No., 2, pp: 271-276.
37
Unlu, L., 2012. Potato: a new host plant of Tuta absoluta Povolny (Lepidoptera: Gelechiidae) in Turkey. Pakistan Journal of Zoology. Vol. 44, No. 4, pp: 1183-1184.
38
Urbaneja, A.; González-Cabrera, J.; Arnó, J. and Gabarra, R., 2012. Prospects for the biological control of Tuta absoluta in tomatoes of the Mediterranean Basin. Pest Management Science. Vol. 68, No. 9, pp: 1215-1222.
39
Walgenbach, J.F.; Leidy, R.B and Sheets, T.J., 1991. Persistence of insecticides on tomato foliage and implications for control of tomato fruitworm (Liopidoptera: Nocluidae). Journal of Economic Entomology. Vol.84, pp: 978-986.
40
Wall, C., 1989. Monitoring and Spray Timings. In: Insect Pheromone in Plant Protection. Edited by Jutsum, A.R. and Gordon, R.F.S, John Wiley & New York. pp: 39-66.
41
Witzgall, P.; Kirsch, P. and Cork, A., 2010. Sex pheromones and their impact on pest management. Journal of Chemical Ecology. Vol. 36, No. 1, pp: 80-100.
42
ORIGINAL_ARTICLE
گیاه دریایی قهوهای سارگاسوم ایلیسیفولیوم (Sargassum ilicifolium) به عنوان همبند در پایداری و جذب آب غذای میگو
پایداری غذا در آب با بهره گیری از ترکیبات شیمیایی و طبیعی به خصوص در مورد سخت پوستان در جهت افزایش بهره وری غذا و کاهش ضریب تبدیل غذایی و متعاقب آن افزایش تولید محصول بسیار با اهمیت می باشد. تاکنون استفاده از ترکیبات شیمیایی هم چون پلی سوربات ها، کارباپول، پلی متالوکاربامید یا باسفین (پلیمر تراکمی اوره فرمالدهید)، بنتونیت ها و ... بسیار مرسوم بوده که به هیچ عنوان در راستای سیاست امنیت غذایی نمی باشد. هدف از اجرای این پروژه استفاده از گونه ای سارگاسوم ایلی سی فولیوم (Sargassum ilicifolium) گیاه دریایی قهوهای به ساحل ریز در جنوب کشور به عنوان همبند طبیعی در غذای میگو می باشد، لذا ضمن جایگزینی صفر درصد (شاهد)، 2 و 5% پودر جلبک با منایع پروتئین فرمولاسیون جیره غذای میگوی سفید غربی، تاثیر جایگزینی آن با پلیسوربات به عنوان همبند (مصرف شده در جیره شاهد) بر پایداری استحکام، ظرفیت جذب آب و بافت پلت غذای میگو مورد بررسی آماری قرار گرفت. بدین منظور ضمن ساخت پلت غذا با روش استاندارد، پلت خشک شده در آب دریا قرار داده و زمان شروع از هم پاشیدگی و درصد جذب آب آن اندازه گیری گردید. نتایج آزمون T-test بین شاهد با هر یک از تیمارهای 2 و 5% گیاه دریایی نشان داد که میزان پایداری غذا و هم چنین درصد جذب آب در تیمار 5% از نظر آماری بهبودی را نسبت به گروه شاهد نشان داد، ضمن آن که از بعد محیط زیستی، یک نوع همبند طبیعی جایگزین یک ماده شیمیایی شده که بر رنگ ، طعم، بو و بافت غذا و نهایتا جذابیت آن برای میگو نیز تاثیر گذار بوده است.
http://www.aejournal.ir/article_120906_53a487d1728b6e8a2e3177111690535e.pdf
2020-09-22
409
414
10.22034/aej.2020.120906
Sargassum illicifolium
پایداری در آب و جذب آب
همبند
میگوی سفید
محمود
حافظیه
jhafezieh@yahoo.com
1
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
علی مهدی
آبکنار
abkenar.am@yahoo.com
2
گروه شیلات و محیط زیست، واحد چابهار، دانشگاه آزاد اسلامی، چابهار، ایران
AUTHOR
اژدری، ح.؛ اژدری، ز.؛ امینی راد، ت.؛ قرنجیک، ب.م. و آبکنار، م.م.، 1383. ارزیابی ذخایر جلبک های به ساحل ریخته شده در سواحل سیستان و بلوچستان. گزارش نهایی پروژه تحقیقاتی موسسه تحقیقات شیلات ایران. 145صفحه.
1
حافظیه، م.؛ متین فر، ع.؛ عبدالحی، ح.؛ حسین زاده، ه.؛ شریفیان، م. و رامین.م.، 1393. آبزی پروری مسئولانه گزارش نهایی پروژه تحقیقاتی موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 289 صفحه.
2
قرنجیک، ب.م.؛ آبکنار، م.م.؛ حافظیه، م. و امینی راد، ت.، 1395. برآورد ذخایر گیاهان دریایی به ساحل ریخته شده استان سیستان و بلوچستان. گزارش نهایی پروژه تحقیقاتی موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 141صفحه.
3
Ackman, M., 1981. Alga as sources of edible oils in new sources of fat & oils. Pryde E.H., Princen, L.H. and Mujerhee, K.D., Ed. New Sources of Fats & Oils: International society for fat Research, American oil Chemists' Society. The American Oil Chemists Society. pp: 189-220.
4
Ali, S.A.A.; Chavali, G.; Ramana, J.V.; Sampoornam, B.S.; Arul Vasu, C.; Vaitheeswaran, T. and Selvakumar, P., 2010. Evaluation of selected binders in a ring-die pellet mill for processing shrimp feed pellets. Indian Journal of Fisheries. Vol. 57, No. 1, pp: 103-106.
5
Briggs, M.R.P. and funge-smith, S., 1996. The potential of Gracilaria spp. Meal for supplementation of diets for juvenile P. monodon fabricius. Aquaculture research. Vol. 27, pp: 345-354.
6
Cerecer-Cota, E.E.; Ricque-Marie, D.; Mendoza-Cano, F.; Nieto-Lopez, M. and Cruz Suarez, L.E., 2005. Pellet stability & Hardness influence feed consumption of Pacific White Shrimp. Global Aquaculture Advocate. Vol. 2, pp: 85-86.
7
Cruz-Suarez, L.E.; Ricque-Marie, D.; Tapia-Salazar, M. and Guajardo-Barbosa, C., 2000. Uso de harina de kelp (Macrocystis pyrifera) en alimentos para camaron.p. 227-266. Editores L.E. Cruz-Suarez, denis Ricque- Marie, Mireya tapia-Salazar, Miguel, A., Olvera-Novoa, y Roberto cerecedo-Olvera. Avances en Nutricion Acuicola V. Memorias del Quinto Simposium International de Nutricion Acuicola, pp: 19-22, Noviembre. Universidad Autonoma de Nuevo Leon, Monterrey, Nuevo Leon, mexico. ISBN 970-694-52-9.
8
Cruz-Suarez, L.E.; Ricoque Marie, D.; Tapia Salazar, M.; Guajardo Barbosa, C.; Obaldo, Leonard, V.; Escudero, M. and Carrasco, A., 2002. Water stability and texture of shrimp pellet feeds formulated with natural & synthetic binders. Global Aquaculture Advocate. Vol. 6, pp: 44-45.
9
Cruz- Suarez, L.E.C.; Salazar, M.T.; Lopez, M.G.N. and Marie, D.R., 2008. A review of the effects of macroalgae in shrimp feeds and in co- culture. 304-333 pp. Proceeding of IX simposio International de Nutricion Acuicola. pp: 24-27, Noviembre, Universidad Autonoma de Nuevo Leon, Nuevo Leon, Mexico.
10
Fleurence, J., 1999. Seaweed proteins: biochemical nutritional aspects & potential uses. Trends in Food science and Technology. Vol. 10, No. 1, pp: 25-28.
11
Greenberg, A.E., 2015. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater. American Public Health Association, American Water Works Association, Water Environment Federation. 457 p.
12
Mabeau, S. and Fleurence, J., 1993. Seaweed in food products: Biochemical & nutritional aspects; Trends Food Sci. Technol. Vol. 4, pp: 103-107.
13
Marinho-Soriano, E.; Camara, M.R.; de Melo Cabal, T. and do Amaral carneiro, M.A., 2007. Preliminary evaluation of the seaweed G. cervicornis as a partial substitute for the industrial feeds used in shrimp (L. vannamei) farming. Aquaculture Research. Vol. 38, No. 2, pp: 182-187.
14
Nakagawa, H. and Montgomery, W.L., 2007. Algae. In: Nakagawa, H., Sato, M., and Gatlin III D.M., Dietary supplements for the health & quality of culture fish. CABI, USA. pp: 133-168.
15
New, M.B., 1995. A manual on the preparation & presentation of compound feeds for shrimp & fish in aquaculture, FAO & UNDP, 1996. 187 p.
16
Penaflorida, V.D. and Golez, N.V., 1996. Use of seaweed meals from Kappaphycus alvarezii & Gracilaria heteroclada as binders in diets of juvenile shrimp Penaeus monodon. Aquaculture. Vol. 143, pp: 393-401.
17
Suarez-Garcia, H.A., 2006. Efecto de la inclusion de alginate y harina de algas Sargassum sp. Macrocystis pyrifera sobre la establidad an agua, digestibilidad del alimento y sobre el crecimiento del camaron blanco L. vannamei. Undergrate thesis. Universidad Autonoma de Nuevo Leon, Mexico.
18
Wong, K.H. and Cheung, P.C.K., 2000. Nutritional evaluation of some subtropical red & green seaweed. Patt I. Proximate composition, amino acid profiles & some physic chemical properties. Food chemistry. Vol. 71, pp: 475-482.
19
Wong, K.H. and Cheung, P.C.K., 2001. Influence of drying treatment on three Sargassum species. Journal of Applied Phycology. Vol. 13, No. 1, pp: 43-50.
20
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی مولکولی اویستر جنس Saccostrea در سواحل شمالی خلیج فارس با استفاده از ژن COI میتوکندری
اویسترهای صخره ای به طور وسیعی در سراسر دنیا گسترده شده اند، با وجود این تا کنون شناسایی و طبقه بندی آن ها به دلیل تغییر پذیری زیاد ریخت شناسی پوسته که متکی به ریخت شناسی موجودات است، مشکل می باشد و در اکثر موارد با خطا همراه است. برخلاف رده بندی که متکی به ریخت شناسی موجودات می باشد، روش های مولکولی می تواند به شناسایی و طبقه بندی گونه هایی که از نظر ریختی دارای ساختارهای مشابه می باشند کمک کند. در این تحقیق تعداد 15 نمونه اویستر صخره ای غالب، از مناطق جزر و مدی شمال خلیج فارس به منظور شناسایی مولکولی جمع آوری شدند. شناسایی بر اساس ریخت شناسی تا حد جنس (Saccostrea) تعیین گردید. استخراج DNA از بافت ماهیچه با استفاده از روش CTAB انجام گرفت. توالی نوکلئوتیدهای زیر واحد 1 ژن سیتوکروم اکسیداز (COΙ) بررسی شد. توالی های نمونه های مورد مطالعه با توالی 16 گونه دیگر موجود در بانک ژن از طریق ترسیم درخت فیلوژنی مقایسه شد. بررسی فیلوژنی از طریق آنالیز Neibour joining نشان داد نمونه های بررسی شده، گونه خواهری S. mordax ماداگاسکار در اقیانوس هند است و با S. mordax دیگر مناطق در دو کلاد جدا قرار گرفته اند. با توجه به نتایج این پژوهش، می توان گفت بر اساس توالی یابی ژن COI، گونه مذکور احتمالاً Saccostrea mordax می باشد که در این صورت برای اولین بار در این منطقه گزارش شده است.
http://www.aejournal.ir/article_120937_bb262aeb281685ea30ccaa6754948842.pdf
2020-09-22
415
420
10.22034/aej.2020.120937
فیلوژنی مولکولی
اویستر صخره ای
خلیج فارس
سیتوکروم اکسیداز (COΙ)
علی
فخری
rez.fakhri@yahoo.com
1
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
AUTHOR
سید محمد باقر
نبوی
nabavishiba@yahoo.com
2
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
سیدجواد
حسینی
sjh1348@gmail.com
3
گروه شیلات و بیولوژی دریا، پژوهشکده خلیج فارس، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ایران
AUTHOR
حسین
ذوالقرنین
zolgharnine@yahoo.com
4
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
AUTHOR
بیتا
ارچنگی
bita.archangi@gmail.com
5
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
AUTHOR
حسین زاده صحافی، ه.؛ رامشی، ح. و دقوقی، ب.، 1396. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 248 صفحه.
1
رضایی، ح.، 1374. بررسی پراکنش نرمتنان در آبهای کمعمق پیرامون برخی از جزایر ایرانی خلیج فارس. گزارش نهایی موسسه تحقیقات شیلات ایران. 162 صفحه.
2
سرمدیان، س.، 1393. بررسی بیان ژن متالوتیونین به عنوان بیومارکر مواجهه با کادمیوم در صدف Crassostrea sp. رساله دکترای تخصصی. دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر. 110 صفحه.
3
میرزا، ر.؛ عضدی، م.؛ توسل پور، ا. و وزیری زاده، ا.، 1394. ارزیابی نرخ فیلتراسیون دوکفه ای Barbatia hellblingii و Saccostrea cucullata در امکان سنجی جهت پایشگر زیستی سواحل خلیج فارس. مجله علوم و فنون دریایی ایران. دوره 14، شماره 1، صفحات 11 تا 20.
4
میرزا، ر.؛ فخری، ع.؛ فقیری، ا. و عظیمی، ع.، 1392. بررسی نسبت نیکل و وانادیوم ناشی از آلودگی های نفتی در رسوبات و صدف صخره ای (Saccostrea cucullata) در سواحل استان بوشهر، خلیج فارس. نشریه اقیانوس شناسی. دوره 4 ، شماره 14 ، صفحات 35 تا 43.
5
یوسفی سیاه کلرودی، س.؛ وثوقی، غ. و رضایی، س.، 1384.بررسی مولکولی جمعیت صدف های خوراکی Saccostrea cucullata در سواحل شمالی خلیج فارس و دریای عمان. پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. دوره 17، شماره 1، صفحات 2 تا 7.
6
Banks, M.A.; McGoldrick, D.J.; Borgeson, W. and Hedgecock, D., 1994. Gametic incompatibility and genetic divergence of Pacific and Kumamoto oysters, Crassostrea gigas and C. sikamea. Marine Biology. Vol. 121, No. 1, pp: 127-135.
7
Bosch, D.T.; Dance, S.P.; Moolenbeek, R.G. and Oliver, P.G., 1995. Seashells of eastern Arabia. Dubai Motivate publishing 18735446429781873544648.
8
Dumbauld, B.R.; Kauffman, B.E.; Trimble, A.C. and Ruesink, J.L., 2011. The Willapa Bay oyster reserves in Washington State: fishery collapse, creating a sustainable replacement and the potential for habitat conservation and restoration. Journal of Shellfish Research. Vol. 30, No. 1, pp: 71-83.
9
Folmer, O.; Black, M.; Hoeh, W.; Lutz, R. and Vrijenhoek, R., 1994. DNA primers for amplification of mitochondrial cytochrome c oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates. Molecular Marine Biology and Biotechnology. Vol. 3, pp: 294-299.
10
Guo, X.; Li, C.; Wang, H., and Xu, Z., 2018. Diversity and Evolution of Living oysters. Journal of Shellfish Research. Vol. 37, No. 4, pp: 755-771.
11
Huber, M., 2010. Compendium of bivalves. A Full-color Guide to 3,300 of the World’s Marine Bivalves. A Status on Bivalvia after 250 Years of Research. ConchBooks, Hackenheim, Germany. 901 p.
12
Kemp, W.M.; Boynton, W.R.; Adolf, J.E.; Boesch, D.F.; Boicourt, W.C.; Brush, G.; Cornwell, J.C.; Fisher, T.R.; Glibert, P.M.; Hagy, J.D. and Harding, L.W., 2005. Eutrophication of Chesapeake Bay: historical trends and ecological interactions. Marine Ecology Progress Series. Vol. 303, pp: 1-29.
13
Kumar, S.; Stecher, G. and Tamura, K., 2016. MEGA7: molecular evolutionary genetics analysis version 7.0 for bigger datasets. Molecular Biology and Evolution, pp: 1870-1874.
14
Lam, K. and Morton, B., 2006. Morphological and mitochondrial-DNA analysis of the Indo-West Pacific rock oysters (Ostreidae: Saccostrea species). Journal of Molluscan Studies. Vol. 72, No. 3, pp: 235-245.
15
Lavery, S.; Chan, T.Y.; Tam, Y.K. and Chu, K.H., 2004. Phylogenetic relationships and evolutionary history of the shrimp genus Penaeus sl derived from mitochondrial DNA. Molecular Phylogenetics and Evolution. Vol. 31, No. 1, pp: 39-49.
16
Liu, J.U.N.; Li, Q.I.; Kong, L.; Yu, H. and Zheng, X., 2011. Identifying the true oysters (Bivalvia: Ostreidae) with mitochondrial phylogeny and distance‐based DNA barcoding. Molecular ecology resources. Vol. 11, No. 5, pp: 820-830.
17
Porebski, S.; Bailey, L.G.; and Baum, B.R., 1997. Modification of a CTAB DNA extraction protocol for plants containing high polysaccharide and polyphenol components. Plant molecular biology reporter. Vol. 15, No. 1, pp: 8-15.
18
Quayle, D.B., 1988. Pacifi c oyster culture in British Columbia. Canadian Bulletin of Fisheries and Aquatic Science. pp: 218-241.
19
Seilacher, A.; Matyja, B.A. and Wierzbowski, A., 1985. Oyster beds: morphologic response to changing substrate conditions. In Sedimentary and Evolutionary Cycles. pp: 421-435.
20
Schindel, D.E. and Miller, S.E., 2005. DNA barcoding a useful tool for taxonomists. Nature. Vol. 435, No. 7038, pp: 17-27.
21
Thompson, J.D.; Higgins, D.G. and Gibson, T.J., 1994. CLUSTAL W: improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position-specific gap penalties and weight matrix choice. Nucleic acids research. Vol. 22, No. 22, pp: 4673-4680.
22
Wahlberg, N.; Braby, M. F.; Brower, A. Z.; Jong, R.; Lee, M.; Nylin, S., 2005. Synergistic effects of combining morphological and molecular data in resolving the phylogeny of butterflies and skippers. Proceedings of the Royal Society of London Series B-Biological Science. pp: 1577-1586.
23
Wang, H. and Guo, X., 2008. Identification of Crassostrea ariakensis and related oysters by multiplex species-specific PCR. Journal of Shellfish Research. Vol. 27, No. 3, pp: 481-487.
24
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی به کارگیری ازن بر افزایش زمان ماندگاری فیله ماهی قزل آلای رنگین کمان در دمای 4 درجه سانتی گراد
هدف از پژوهش حاضر، ارزیابی به کارگیری ازن برافزایش زمان ماندگاری فیله ماهی قزل آلای رنگین کمان در دمای 4 درجه سانتی گراد می باشد. 4 نمونه ماهیقزل آلا تازه (1 تیمار شاهد و 3 تیمار گاز ازن در زمان های 5 ، 10 و 15 دقیقه ) با وزن متوسط 300 گرم تهیه شده و بلافاصله بعد از شستشو با آب معمولی، فیله شدند و بعد از طی قرار گرفتن تحت تیمار ازن توسط دستگاه ازنایزر (توان 13 وات، ظرفیت 200 میلی گرم در ساعت)، به صورت مجزا بسته بندی و زیپ شده و در یخچال قرار گرفتند و پس از گذراندن 3 روز در این شرایط تمامی نمونه ها را در کیف یخ (با حفظ شرایط سرما برای نمونه ها) به سرعت به آزمایشگاه منتقل و خصوصیات میکروبی و شیمیایی و حسی آن در مقایسه با نمونه تیمار نشده مورد مقایسه قرار گرفت و نتایج به دست آمده با برنامه آماری Spss مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت (برای هر تیمار 3 تکرار در نظر گرفته شد). نتایج حاصل نشان داد که با گذشت زمان (در روزهای 3، 6 و 9) تیمارهای 1، 2 و 3 نسبت به تیمار شاهد در فاکتورهای ظرفیت نگه داری آب و بافت (قابلیت های: جویدن، انسجام، سختی و ارتجاعی) کاهش داشته و در فاکتورهای تعیین بار میکروبی، سنجش مجموع بازهای نیتروزنی فرار، تیوباربیتوریک اسید، شمارش سودوموناس، آنالیز رنگی نور و طیف زرد و آبی افزایش داشته و هم چنین در ارزیابی حسی با روش هدونیک تیمارهای روز 3 نسبت به تیمار سایر روزها بیش تر مورد مقبولیت قرار گرفت.
http://www.aejournal.ir/article_121017_2984e238610f07d3c8ad2a1a595eba69.pdf
2020-09-22
421
434
10.22034/aej.2020.121017
ازن
فساد
زمان ماندگاری
قزل آلای رنگین کمان
سحر
جاسبی
saharjasbi@hotmail.com
1
گروه علوم و مهندسی صنایع غذایی، دانشکده علوم وفنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
امیر اقبال
خواجه رحیمی
khajehrahimi@yahoo.com
2
گروه علوم و مهندسی صنایع غذایی، دانشکده علوم وفنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
مهدی
نیکخواه
mehdi.nikkhah@yahoo.com
3
گروه علوم و مهندسی صنایع غذایی، دانشکده علوم وفنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
توکلی، ح.؛ رنجبر، ر.؛ رستمی، ح.؛ دلخوش، م.؛ نورآبادی، م.؛ رستمی، ف. و یزدانی، ج.، 1389. بررسی تاثیر گاز ازن در کاهش آلودگی باکتریایی لاشه مرغ کشتار شده در یکی از کشتارگاههای صنعتی تهران. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. جلد 4، شماره 4، صفحات 74 تا 66.
1
طاهرنژاد، ب.؛ مختاری، م.؛ رضوانی، ح. و کسایی، ن.، 1387. بررسی اثر ضد عفونی کنندگی ازن درمقایسه با سایر مواد ضدعفونی جهت از بین بردن آلودگی E. coli لاشه طیور. خلاصه مقاله پانزدهمین کنگره دامپزشکی ایران. جامعه دامپزشکان ایران. تهران.
2
میان، ر.؛ رضایی، م. و مرتضوی، م.ص.، 1394. تأثیر یخ ازن دار برکیفیت شیمیایی و میکروبی عضله ماهی طلال (Rastrelliger kanagurta) طی دوره کوتاه مدت نگه داری. مجله علوم و فنون شیلات. دوره 4، شماره 4، صفحات 109 تا 120.
3
Adebayo-Tayo, B.; Odu, N.; Anyamele, L.; Igwiloh, N. and Okonko, I. 2012. Microbial quality of frozen fish sold in Uyo Metropolis. Nature & Science. Vol. 10, pp: 71-77.
4
Aguayo, E.; Escalona, V.H. and Artes, F., 2006. Effect of cyclic exposure to ozone gas on physicochemical, sensorial and microbial quality of whole and sliced tomatoes. Postharvest Biol Technol. Vol. 39, pp: 169-177.
5
Ali, M.Y.; Hossain, M.B. and Shamsuddin, M., 2012. Microbiological status in a fully export oriented shrimp processing plant. World Applied Sciences Journal. Vol. 16, pp: 903-906.
6
Álvarez, A.; García García, B.; Garrido, M.D. and Hernández, M.D., 2008. The influence of starvation time prior to slaughter on the quality of commercialsized gilthead seabream (Sparus aurata) during ice storage. Aquaculture. Vol. 284, pp: 106-114.
7
Alvarez, C.; Couso, I. and Tejada, M., 1999; Thermal gel degradation (modori) in sardine surimi gels. J. Food Sci. Vol. 64, No. 4, pp: 633-637.
8
AOAC (Association of official analytical chemists). 2002. Moisture in Meat and poultry product Method 985.14. Official Methods of Analysis (17th edn). Washington, DC: Association of Official Analytical Chemists.
9
AOAC (Association of official analytical chemists). 2005. Official methods of analysis, Arlington, Virginia.
10
AOAC (Association of official analytical chemists). 1995. Official Methods of Analysis, 16th edition. AOAC, Arlington, Virginia. 1141 p.
11
Auburg, S.P., 1993. Review: interaction of malonaldehyde with biological molecules new trends about reactivity and significance. International Journal of Food Science and Technology. Vol. 28, pp: 323-335.
12
Basti, A.A.; Misaghi, A.; Salehi, T.Z. and Kamkar, A., 2006. Bacterial pathogens in fresh, smoked and salted Iranian fish. Food control. Vol. 17, pp: 183-188.
13
Black, V.S., 1951. Osmotic regulations in teleost fishes. In Some Aspects of the Physiology of Fish. Toronto: University of Toronto Press. pp: 53-89.
14
Bugueno, G.; Escriche, I.; Martı́nez-Navarrete, N.; del Mar Camacho, M. and Chiralt, A., 2003. Influence of storage conditions on some physical and chemical properties of smoked salmon processed by vacuum impregnation techniques. FoodChemistry. Vol. 81, No. 1, pp: 85-90.
15
Bono, G. and Badalucco, C., 2012. Combining ozone and modified atmosphere packaging (MAP) to maximize shelf life and quality of striped red mullet (Mullus surmuletus), LWT-food science & technology. Vol. 47, No. 2, pp: 500-504.
16
Carmen, C.A.; Rodríguez, Ó.; Losada, V.; Aubourg, S.P. and Barros-Velázquez, J., 2005. Effects of storage in ozonised slurry ice on the sensory and microbial quality of sardine (Sardina pilchardus). International journal of food microbiology. Vol. 103, No. 2, pp: 121-130.
17
Chytiri, S.; Chouliara, I.; Savvaidis, I.N. and Kontominas, M.G., 2004. Microbiological, chemical and sensory assessment of iced whole and filleted aquacultured rainbow trout. J of Food Microbiology. Vol. 21, pp: 157-165.
18
Clough, R. and Gillen, K.T., 1989. Polymer Degradation under Ionizing Radiation: The Role of Ozone. J. Polymer Science. Vol. 27, pp: 2313-2324.
19
Eun, J.B.; Boyle, J.A. and Hearnsberger, J.O., 1994. Lipid peroxidant and chemical change in Catfish (Ictalurus punctatus) muscle microsoes during frozen storage. J. Food Sci. Vol. 59, pp: 251-255.
20
Feng, L.; Jiang, T.; Wang, Y. and Li, J., 2012. Effects of tea polyphenol coating combined with ozone water washing on the storage quality of black sea bream. Food chemistry. Vol. 135, No. 4, pp: 2915-2921.
21
Gao, W.; Liu, Y.J.; Tian, L.X.; Mai, K.S.; Liang, G.Y.; Yang, H.J.; Huai M.Y. and Luo, W.J., 2009. Effect of dietary carbohydrate-tolipid ratios on growth performance, body composition, nutrient utilization and hepatic enzymes activities of herbivorous grass carp (Ctenopharyngdon idella). Aquaculture Nutrition. Vol. 16, pp: 327-333.
22
Gomes, H.A.; Silva, E.N.; Nascimento, M.R.L. and Fukuma, H.T., 2003. Evaluation of the 2 thiobarbituric acid method for the measurement of lipid oxidation in mechanically deboned gamma irradiated chicken meat. Food Chemistry. Vol. 80, pp: 433-437.
23
Gram, L. and Huss, H.H., 1996. Microbiological spoilage of fish and fish products. International Journal of Food Microbiology. Vol. 33, pp: 121-137.
24
Gram, L. and Dalgaard, P., 2002. Fish spoilage bacteria problems and solutions. Current Opinion is Biotechnology. Vol. 13, pp: 262-262.
25
James, C.S., 1995. Analitical chemistry of foods. Blackie academic Professional press.
26
Kerr, M.; Lawicki, P.; Aguirre, S. and Rayner, C., 2002. Effect of storage conditions on histamine formation in fresh and canned Tuna. State Chemistry Laboratory- Food Safety Unit, Department of Human Service, Werribee. pp: 5-20.
27
Khadre, M.; Yousef, E. and Kim, J., 2001. Microbiological spects of Ozone Applications in Food: A ReviewJ.Food Science. Vol. 66, No. 9, pp: 1242-1252.
28
Lopez-Caballero, M.E.; Gómez-Guillén, M.C.; Pérez Mateos, M. and Montero, P., 2005. A chitosan–gelatin blend as a coating for fish patties. Food Hydrocolloids. Vol. 19, No. 2, pp: 303-311.
29
Lu, F.; Liu, S.L.; Liu, R.; Ding, Y.C. and Ding, Y.T., 2012. Combined effect of ozonized water pretreatment and ozonized flake ice on maintaining quality of Japanese sea bass (Lateolabrax japonicus). Journal of aquatic food product technology. Vol. 21, No. 2, pp: 168-180.
30
Naito, S. and Takahara, H., 2006. Ozone Contribution in Food Industry in Japan. J. Ozone: science and Engineering. Vol. 28, pp: 425-429.
31
Niazi shahraki, S.; Rokni, N.D.; Rzavilar, D.;Bahonar, A. and Akhoundzadeh, A., 2008. Qualitative and quantitative assessmentive assessment of poultry carcasses contaminated with Salmonella in Tehran industrial Slaughterhouses. J veter res. Vol. 62, No. 6, pp: 385-389.
32
OSHA. 2004. Chemical sampling information: ozone. Available from: http://www.osha. gov/dts/chemicalsampling/ data/ CH_259300.html (accessed 10 September 2011).
33
Papadopoulos, V.; Chouliara, I.; Badeka, A.; Savvaidis, I.N. and Kontominas, M.G., 2003. Effect of gutting on microbiological, chemical. and sensory properties of aquacultured sea bass (Dicentrarchus labrax) stored in ice. Food Microbiology. Vol. 20, pp: 411-420.
34
Rong, C.; Qi, L.; Bang-zhong, Y. and Lan-lan, Z., 2010. Combined effect of ozonated water and chitosan on the shelf life of Pacific oyster (Crassostrea gigas). Innovative food science & emerging technologies. Vol. 11, No. 1, pp: 108-112.
35
Rodriguez, A.; Carriles, N.; Cruz, J.M. and Aubourg, S.P., 2008. Changes in the flesh of cooked farmed.
36
Selma, M.V.; Ibanez, A.M.; Allende, A.; Cantwell, M. and Suslow, T., 2008. Effect of gaseous ozone and hot water on microbial and sensory quality of cantaloupe and potential transference of Escherichia coli O157:H7 during cutting. Food Microbiol. Vol. 25, pp: 162-168.
37
Yousef, A.; Vurma, M. and Rodriguez-Romo, L., 2011. Basics of Ozone Sanitization and Food Applications. J. Nonthermal Processing Technologies for Food. https://doi. org /10.1002/9780470958360.ch21.
38
WHO. 1999.The effect of gamma rays on shelf life.
39
Zhao, Y.; Yang, X.; Li, L.; Hao, S.; Wei, Y.; Cen, J. and Lin, H., 2017 Chemical, Microbiological, Color & Textural Changes in Nile Tilapia Fillets Sterilized by Ozonated Water Pretreatment During Frozen Storage. Journal of Food Processing and Preservation. Vol. 41, No. 1, pp: e12746.
40
ORIGINAL_ARTICLE
خوشه بندی مبتنی بر آنتولوژی ژن های هدف ریزRNA های مؤثر بر تولید شیر
شیر گاو مایعی بسیار مغذی است و بخش مهمی از رژیم غذایی یک فرد می باشد و تمامی مواد مورد نیاز بدن انسان را در خود دارد. استراتژی هایی که از طریق آن می توان تولید شیر را تحت تأثیر قرار داد، شناسایی ژن هایی که روی تولید و ترکیب شیر اثر می گذارند و استراتژی دیگر شناسایی ریزRNAهایی که بیان ژن های مؤثر را تحت تأثیر قرار می دهند. در این مطالعه ابتدا داده های ریزRNAهای مربوط به غده پستانی گاو شیری با کد شناسایی E-GEOD-61227از پایگاه GEO پیاده سازی شدند. بعد از مشخص شدن میزان بیان ریزRNAها، شناسایی ژن های هدف ریزRNA ها به کمک پایگاه داده ای miRwalk انجام گردید. سپس برای فرآیند خوشه بندی ژن ها بر مبنای ساختار درختی آنتولوژی ژن که شامل سه زیر آنتولوژی فرآیند بیولوژیکی، عملکرد ملکولی و جزء سلولی است از نرم افزار AgriGO استفاده گردید. در مطالعه حاضر براساس خوشه بندی مبتنی بر آنتولوژی ژن های هدف نتایج نشان داد که فعالیت های بیولوژیکی مورفوژنز بافت پستانی و تکثیر سلول های اپیتلیال در سطح بسیار معنی داری می باشند که این فرآیندها در تکامل و توسعه غدد پستان نقش بسیار مهمی دارند و نتایج براساس فعالیت مولکولی نشان داد که سیگنال دهی با استفاده از پروتئین های گیرنده کینازی بیش ترین سطح معنی داری به خود اختصاص داده است. هم چنین نتایج مربوط به بخش اجزا سلولی نشان داد بیش ترین شمار ژن های هدف در بخش داخلی غشا سلولی ارگانل و غشا پلاسمایی قرار دارند. بنابراین، ژن های هدفی که تنظیم کننده این فرآیندهای معنی دار می باشند پتانسیل ایفای نقش قابل توجه جهت یافتن راهکاری هدفمند در راستای بهبود صفت تولید شیر را دارند.
http://www.aejournal.ir/article_118071_6d833bfee0de4103deba3f251d05e59e.pdf
2020-09-22
435
440
10.22034/aej.2020.118071
آنتولوژی ژن
ریزRNA
خوشه بندی ژن
تولید شیر
سعیده
اسکندری نسب
saideh.skandary68@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه یاسوج، یاسوج، ایران
AUTHOR
زهرا
رودباری
roudbari.zahra@ujiroft.ac.ir
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه جیرفت، جیرفت، ایران
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
بحرینی بهزادی
bahreini@yu.ac.ir
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه یاسوج، یاسوج، ایران
AUTHOR
Bar-Joseph, Z., 2004. Analyzing time series gene expression data. Bioinformatics. Vol. 20, No. 16, pp: 2493-2503.
1
Barrett, T.; Wilhite, S.; Ledoux, P.; Evangelista, C. and Kim, I., 2013. Ncbi Geo Archive for functional genomics data sets-update. Nucleic acids research. Vol. 41, No. 1, pp: D991-D995.
2
Cole, J.B.; Lewis, R.M.; Maltecca, C.; Newman, S.; Olson, K. and Tait, J.R., 2013. Breeding and genetics sympuosium Systems biology in animal breeding identifying relationships among markers, genes and phenotypes. Journal of Animals Science. Vol. 91, No. 2, pp: 521-522.
3
Dengjel, J.; Kratchmarova, I. and Blagoev, B., 2009. Receptor tyrosine kinase signaling: a view from quantitative proteomics. Molecular biosystems. Vol. 10, No. 5, pp: 12-21.
4
Dopazo, J., 2006. Functional interpretation of microarray experimentsOmics: a journal of integrative biology. Vol. 10, No. 3, pp: 398-410.
5
Finucane, K.A.; McFadden, T.B.; Bond, J.P.; Kennelly, J.J. and Zhao, F.Q., 2008. Onseft of lactation in the bovine mammary gland: gene expression profiling indicates a strong inhibition of Gene expression in cell proliferation. Functional and integrative genomics. Vol. 8, No. 3, pp: 251-264.
6
Friedman, R.C.; Farh, K.K.H.; Burge, C.B. and Bartel, D.P. 2009. Most mammalian mRNAs are conserved targets of microRNAs.Genomics research. Vol. 19, No. 1, pp: 92-105.
7
Goujon, M.; Mcwilliam, H.; Li, W.; Valentin, F.; Squizzato, S.; Paern, J. and Lopez, R., 2010. A new bioinformatics analysis tools framework at EMBL-EBI. Nucleic acids research. Vol. 38, No. 2, pp: 695-699.
8
Gupta, R. and Achenie, L.E., 2007. A network model for gene regulation. Computers and chemical engineering. Vol. 31, No. 8, pp: 950-961.
9
Kharrati, K.H.; Mohammadabadi, M.R.; Ansari, M.S.; Esmailizadeh, A.K.; Tarang, A. and Nikbakhti, M., 2012. Effect of DGATI variants on milk composition traits in Iranian Holstein cattle population Iran. Journal of animal Science. Vol. 3, No. 3, pp: 185-192.
10
Khatri, P. and Draghici, S., 2005. Ontological analysis of gene expression data: current tools, limitations, and open problems. Bioinformatics. Vol. 21, No.1, pp: 3587-3595.
11
Li, S.; Becich, M.J. and Gilbertson, J., 2004. Microarray data mining using gene ontology. In MEDINFO. pp: 778-782.
12
Niemi, J., 2007. Accuracy of the Bayesian Network Algorithms for inferring gene regulatory network in engineering physics and mathematics systems analysis laboratory: Helsinki university of technology. Vol. 2, No. 108, pp: 1-21.
13
Rawool, B. and Venkatesh, V., 2007. Steady state approach to model gene regulatory networks simulation of microarray experiments. Biosystems. Vol. l90, No. 3, pp: 636-655.
14
Shin, K.C.; Chen, R.M.; Hu, R.M.; Liu, F.M.; Chen, H.K. and Tsai, J.J., 2004. Prediction of gene regulatory networks using differential expression of cDNA microarray data. In IEEE Sixth international symposium on multimedia software engineering. pp: 378-385.
15
Smith, B.; Williams, J. and Schulze, K., 2003. The Ontology of the Gene Ontology. In American medical informatics association Annuesymp proc. pp: 609-613.
16
Sticht, C.; De, C.; Parveen, A. and Grtez, N., 2018. miRwalk; an online resource for prediction of microRNA binding sites. Plos One. Vol. 13, No. 10, pp: e0206239.
17
Wang, C.; Jing, R.; Mao, X.; Chang, X. and Li, A., 2011. TaABC1, a member of the activity of bc1 complex protein kinase family from common wheat, confers enhanced tolerance to abiotic stresses in Arabidopsis. Journal of Experimental Botany. Vol. 62, No. 1, pp: 1299-1311.
18
Yang, J. and Weinberg, R.A., 2008. Epithelial mesen chymal transition at the crossroads of development and tumor metastasis. Developmental Cell. Vol. 14, No. 6, pp: 818-829.
19
Yavari, F.; Towhidkhad, F. andGharibzadeh, S. 2008. Modelling large-sccale gene regulatory networks using gene ontology-based clustering and dynamic Bayesian network. In the 2nd international conference on bioinformatics and biomedical engineering. pp: 297-308.
20
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه اثرات تجویز خوراکی دی پنیسیلامین و عصاره الکلی گیاه خار مریم بر میزان سرب عضلات سینه و ران اردک نژاد Pekin
اردک ها با توجه به رفتار کنجکاوانه مخصوص به خود و نحوه تغذیه شان که شامل لجن ها و مواد و اشیاء باقی مانده در حاشیه رودخانه ها و مرداب ها است در معرض ابتلاء به فرم مزمن مسمومیت با سرب هستند. بنابراین هدف از این تحقیق بررسی مقایسه اثر دی پنیسیلامین و سیلی مارین بر باقی مانده سرب در عضلات اردک های تحت تاثیر سرب می باشد. به منظور بررسی اثر دی پنیسیلامین و سیلی مارین بر میزان سرب در عضلات ران و سینه اردک های تحت تاثیر سرب، تعداد 120 قطعه اردک یک روزه نژاد Pekin به 4 گروه 30 قطعه ای در سه تکرار شامل گروه 1: دریافت کننده جیره پایه در کل دوره آزمایش (گروه شاهد)، گروه 2: دریافت کننده جیره پایه + نیترات سرب با دوز 40 میلی گرم/کیلوگرم (گروه کنترل)، گروه 3: دریافت کننده جیره پایه + نیترات سرب با دوز 40 میلی گرم/کیلوگرم + دی پنیسیلامین با دوز 20 میلی گرم/کیلوگرم (گروه درمان دی پنیسیلامین)، گروه 4: دریافت کننده جیره پایه + نیترات سرب با دوز 40 میلی گرم/کیلوگرم +عصاره الکلی خار مریم با دوز 300 میلی گرم/کیلوگرم (گروه درمان سیلی مارین) تقسیم بندی گردیدند و به مدت 60 روز پرورش یافتند. پس از پایان دوره پرورش و کشتار اردک ها مطابق پروتکل های اخلاقی نمونه گیری از عضلات سینه و ران در هر قطعه کشتار شده اخذ (از هر پن 5 قطعه) و غلظت سرب هر نمونه توسط دستگاه اسپکترومتری جذب اتمی به روش کوره اندازه گیری گردید. با توجه به نتایج به دست آمده در تحقیق حاضر دی پنیسیلامین و سیلی مارین با خاصیت آنتی اکسیدان خود توانستند به طور معنی داری 0/05>p میزان سرب باقی مانده در عضلات ران و سینه کاهش دهند. با این حال اثر عصاره الکلی خار مریم نسبت به پنیسیلامین قوی تر بود و مقدار سرب موجود در عضله ران تحت درمان با عصاره خار مریم در مقایسه با عضله سینه اندکی کم تر بود و می توان به عنوان داروی موثر در کاهش فلزات سنگین پیشنهاد گردد.
http://www.aejournal.ir/article_120783_5dd61ea132d75e52c67696d2f0d58b37.pdf
2020-09-22
441
448
10.22034/aej.2020.120783
دی پنیسیلامین
سرب
سیلی مارین
اسپکترومتری جذب اتمی
اردک نژاد Pekin
حامد
زارعی
h.zarei@iautmu.ac.ir
1
گروه فیزیولوژی، دانشکده علوم و فناوری های نوین، واحد علوم پزشکی تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
صدراله
دولت
siamak_yousefi1@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، واحد گرمسار، دانشگاه آزاد اسلامی، گرمسار، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، ر.؛ محمدآبادی، ط.؛ ساری، م.؛ سالاری، س.؛ ضمیری، م.ج. و بیگی نصیری، م.ت.، 1392. اثر سیلی مارین بر تنش اکسیداتیو ایجاد شده توسط سرب در جوجه های گوشتی. نشریه پژوهش های علوم دارویی ایران. جلد5، شماره 4، صفحات 310 تا 312.
1
ابراهیمی سیریزی، ز.؛ ساکی زاده، م.؛ اسماعیلی ساری، ع.؛ بهرامی فر، ن.؛ قاسمپوری، س.م. و عباسی، ک.، 1391. بررسی فلزات سنگین کادمیوم، سرب، مس و روی در بافت عضله اردک ماهی تالاب بین المللی انزلی، انباشتگی و ارزیابی خطرات. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. دوره 22، شماره 87، صفحات 57 تا 63.
2
اتفاق دوست، م. و علاف نویریان، ح.، 1399. مطالعه تجمع بیولوژیک شبه فلزات و فلزات سنگین در بافت عضله اردک ماهی (1758 (Esox Lucius Linnaeus, رودخانه سیاه درویشان (استان گیلان). مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 75، شماره 2، صفحات 156 تا 165.
3
حقی، ق. و پیرعلی، م.، 1382. شناسایی و تعیین مقدار سیلی مارین در گیاه خار مریم Silybum marianum و چند فراورده دارویی آن. تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران. دوره 19، شماره 1، صفحات 73 تا 86.
4
سینکا کریمی، م.ح.؛ پور خباز، ع. و حسین پور، م.، 1394. بررسی استفاده از آب و بافت پرندگان آبزی جهت سنجش آلودگی فلزی (مطالعه موردی: تالاب های بین المللی میانکاله و گمیشان). فصلنامه علمی پژوهشی اکوبیولوژی تالاب دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 6، شماره 23، صفحات 15 تا 28.
5
ضیایی، س.؛ فلاح حسینی، ح.؛ رجبیان، ط.؛ پورحسینی، ل.؛ نقدی بادی، ح. و رضازاده، ش.، 1383. بررسی اثر حلال های مختلف در استخراج سیلی مارین از بذر گیاه خار مریم. فصلنامه گیاهان دارویی. سال 4، شماره 2، صفحات 1 تا 6.
6
علیشاهی، م.؛ طولابی دزفولی، ز. و اسروش، ا.، 1397. اثر پنیسیلامین و EDTA بر سمیت نانوذرات نقره در ماهی شیربت. فصلنامه علمی پژوهشی اکوبیولوژی تالاب. سال 10، شماره 37، صفحات 103 تا 112.
7
کبیری فرد، ح.؛ شیخی نژاد، ا. و معصومی، م.، 1391. سنجش مقدار آلودگی فلزات سنگین (آهن، روی، سرب و نیکل) در آب های سطحی، خاک و سبزی کشت شده شهرستان پیشوا. پژوهش های علوم و فنون دریایی. دوره 7، شماره 3، صفحات 1 تا 12.
8
Anjum, M.R.; Sainath, S.B.; Suneetha, Y. and Reddy, P.S., 2011. Lead acetate induced reproductive and paternal mediated developmental toxicity in rats. Ecotoxicol Environ Saf. Vol. 74, No. 4, pp: 793-799.
9
Bahaa, E.A.; Saleh, M.C. and Taich, M.C., 2007. Fundamentals of Photonics, Wiley Interscience.
10
Ferreyra, H.; Romano, .Mand Uhart, M., 2009. Recent and Chronic Exposure of Wild Ducks to Lead in Human Modified Wetland in Santa Fe Province. Argentina. J Wildl Dis. Vol. 45, No. 3, pp: 823-927.
11
Garza, A.; Vega, R. and Soto, E., 2006. Cellular mechanisms of lead neurotoxicity. Med Sci Monit. Vol. 12, No. 3, pp: 57-65.
12
Golalipour, M.; Roshandel, D.; Roshandel, G.; Ghafari, S. and Kalavi, M., 2007. Effect of Lead Intoxication and D Penicillamine Treatment on Hematological Indices in RatsInt J Morphol. Vol. 25, No. 4, pp: 717-722.
13
Hamidian, G.; Mirdar, S.; Raee, P.; Asghari, K. and Jarrahi, M., 2020. Silymarin protects the structure of kidney in the neonatal rats exposed to maternal cadmium toxicity: A stereological study. Veterin Res For. Vol. 11, No. 2, pp: 143-152.
14
Kamil, K.A.; Kartasudjana, R.; Iskandar, S. and Latipudin, D., 2011. Effect of Phytate in Diet and Lead in Drinking Water on Blood Mineral and Growth of Ducks. International Scientific Symposium-60 Years of Animal Science Higher Education in Moldova.
15
Kitter, S.; Wilasrusmee, S.; Pedresen, W.A.; Mattson, M.P.; Strabe-West, K.; Wilasrusmee, C.; Lubelt, B. and Kittur, D.S., 2002. Neurotrophic and neuroprotective effect of milk thistle (Silybum marianum) on neurons in culture. J Molec Neurosci. Vol. 18, pp: 265-269.
16
Lyle, W.H., 1981. Penicillamine in metal poisoning. J Rheumatol Suppl. Vol. 7, pp: 96-99.
17
Marchetti, C., 2003. Molecular targets of lead in brainneurotoxicity. Neurotox Res. Vol. 5, No. 3, pp: 221-236.
18
Miolservic, N. and Maire, P., 2000. Lead stimulates intracellular signaling between hepatocytes and kupffer cells. Enr J Pharmacol. Vol. 401, pp: 317-328.
19
Mitra, S.K.; Venkataranganna, M.V.; Sundaram, R. and Gopumadhavan, S., 1998. Protective effect of HD-03, an herbal formulatin, against various hepatotoxic agents in rats. J. Ethnopharmacology. Vol. 63, pp: 181-186.
20
Nencini, C.; Giorgi, G. and Micheli, L., 2007. Protevtive effect of silymarin on oxidative stress in rat brain. Phytomed. Vol. 14, pp: 129-135.
21
Nasreddine, L.and Parent-Massin, D., 2002. Food contamination by metals and pesticides in the European Union. Should we worry? Toxi letters. Vol. 127, No. 1, pp: 29-41.
22
Narayana, K. and Al-Bader, M., 2011. Ultrastructural and DNA damaging effects of lead nitrate in the liver. Exp andTox Path. Vol. 63, pp: 43-51.
23
Navas-Acien, A.; Guallar, E.; Silbergeld, E.K. and Rothenberg, S.J., 2007. Lead exposure and cardiovascular disease - A systematic review. Environ Health Perspect.Vol. 115, pp: 472-482.
24
Nosratola, D. and Vaziri, A.M., 2008. Mechanisms of lead induced hypertension and cardiovascular disease. J Physiol Heart Circ Physiol. Vol. 295, pp: H454-H465.
25
Osuchowski, M.F.; Johnson, V.J.; He, Q. and Sharma, R.P., 2004. Alteration in regional brain neur otransmitters by silymarin, a natural antioxidant flavonoid mixture, in BALB/c mice. Pharm Biol. Vol. 42, pp: 384-389.
26
Oymak, S.A.; Karadede-Akin, H.and Dogan, N., 2009. Heavy metal in tissues of Tor grypus from Ataturk Dam Lake, Euphrates River Turkey. Biologia. Vol. 64, pp: 151-155.
27
Schuppan, D.; Jia, J.D.; Brinkhaus, B. and Hahn, E.G., 1999. Herbal products for liver diseases. Hepat. Vol. 30, No. 4, pp: 1099-1104.
28
Sergio, P., 1996. Lead poisoning in: Nelson text book of pediatrics, Nathen and Oski. WB Saunders, Philadelphia, U.S.A.
29
Sharifi, A.M.; Baniasadi, S.; Jorjani, M.; Rahimi, F. and Bakhshayesh, M., 2002. Investigation of acute lead poisoning on apoptosis in rat hippocampus in vivo. Neurosci Lett. Vol. 329, pp: 45-48.
30
Streiff, M.B.; Smith, B. and Spivak, J.L., 2002. The diagnosis and management of polycythemia vera in the era since the Polycythemia Vera Study Group: a sur- vey of American Society of Hematology mem- bers’ practice patterns. Blood. Vol. 9, pp: 1144-1449.
31
Sunil, K.M.; Asok, M.; Nguyen, T.V. and Bharat, B.A., 1999. Silymarin suppresses TNF induced activation of NFKb, c-Jun N-Terminal Kinase, and Apoptosis. J Molecul Biol. Vol. 18, pp: 6800-6809.
32
Tuormaa, T.E., 1995. The adverse effects of lead. J Orthomol Med. Vol. 10, No. 3-4, pp: 149-164.
33
Uysal, K.; Emre, Y.and Kose, E., 2008. The determination of heavy metal accumulation ratios in muscle, skin and gills of some migratory fish species by inductively coupled plasma-optical emission spectrometry (ICP-OES) in Beymelek Lagoon (Antalya/Turkey). Microchem. J. Vol. 90, pp: 67-70.
34
WHO. 1999. Treatment technique and results, lead poisoning over view, world health organization. www.leadpoisining. net/treat/workshop.html.
35
WHO. 1993. Evaluation of certain food additives and contaminants (41st Report of the Joint FAO/WHO Expert Committee on Food Additives). Geneva: World Health Organization, WHO Technical Report Series. (837 p).
36
Yang, Ch.S.; Landau, J.M.; Huang, M.T. and Newmark, H.L., 2001. Inhibition of carcinogenesis by dietary polyphenolic compounds. Annu. Rev. Nut. Vol. 21, pp: 381-406.
37
ORIGINAL_ARTICLE
اثر همه گیری کووید-19 بر آلاینده دی اکسیدنیتروژن در پنج پناهگاه حیات وحش و شهرهای بزرگ مجاور آن ها در ایران
این مطالعه با هدف تعیین اثر بروز همه گیری کووید-19 و محدودیت های اجتماعی ناشی از آن بر تغییرات سطوح آلاینده دی اکسید نیتروژن در پنج پناهگاه حیات وحش ایران شامل حیدری، میانکاله، قمیشلو، بختگان و شادگان و پنج کلان شهر نزدیک به آن ها به ترتیب شامل مشهد، ساری، اصفهان، شیراز و اهواز و مقایسه این داده ها با اطلاعات دوره زمانی مشابه سال قبل از بروز همه گیری انجام شد. داده های مورد نیاز پایش جوی از پایگاه اطلاعات ناسا در فاصله زمانی 19 فوریه تا 01 ژوئن 2019 و هم چنین برای 19 فوریه تا 01 ژوئن 2020 دریافت شد و در نرم افزارهای پایتون، متلب و مینیتب مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت. تحلیل آماری نشان داد که میانگین سطوح آلاینده در سال های 2019 بین کلان شهرها و بین پناهگاه ها اختلاف معنی دار داشت در حالی که در سال 2020 اختلاف معنی دار مشاهده نشد. هم چنین نتایج نشان داد که کووید-19 اثر محسوسی را در کاهش مقدار دی اکسید نیتروژن در شهر ساری و پناهگاه میانکاله داشته است. مقدار این آلاینده برای پناهگاه شادگان و شهر اهواز در سال 2020 کم تر از 2019 بوده است است ولی برای پناهگاه شادگان تفاوت چندانی نداشته است. محدودیت های اجتماعی ناشی از بیماری کووید 19 بر روی مقدار دی اکسید نیتروژن کلان شهر مشهد اثر کاهشی قابل توجه داشته است به طوری که مقدار این آلاینده در بازه سه ماهه مورد مطالعه به طور میانگین 44 درصد کاهش یافته است اما به دلیل کمبود اطلاعات در مورد پناهگاه حیدری نمی توان برای کل دوره سه ماهه قضاوت کرد. دی اکسید نیتروژن در پناهگاه بختگان در سه ماهة سال 2019 و 2020 تغییر محسوسی نداشته است هرچند در شهر شیراز تا روز 13 آوریل هم زمان با 24 فروردین ماه، مقدار دی اکسید نتروژن در اثر بیماری کووید 19 کاهش محسوسی داشته است ولی از 13 آوریل به بعد، مقدار این آلاینده با وجود بیماری کووید 19 بیش تر از سال قبل بوده است. انجام مطالعات بیش تر برای شناسایی اثرات محدودیت کننده ناشی از همه گیری کووید-19 بر وضعیت سایر آلاینده های جوی در پناهگاه های حیات وحش ایران پیشنهاد می شود.
http://www.aejournal.ir/article_120799_5ec98eb048a182548a9af89662fe3248.pdf
2020-09-22
449
456
10.22034/aej.2020.120799
کووید-19
سنجش تروپوسفری
دی اکسید نیتروژن
پناهگاه حیات وحش
کلان شهر
محمد
شجاع الدینی
shojaaddini@tvu.ac.ir
1
آموزشکده کشاورزی شهریار، دانشگاه فنی و حرفه ای استان تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
اشکان
موسویان
a_moosavian@tvu.ac.ir
2
آموزشکده کشاورزی شهریار، دانشگاه فنی و حرفه ای استان تهران، ایران
AUTHOR
سیامک
یوسفی سیاه کلرودی
siamak_yousefi1@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، پیشوا، ایران
AUTHOR
Anonymous, 1987. Arctic National Wildlife Refuge, Alaska. U.S. Government Printing Office. pp: 135-155.
1
Atkinson, R.W.; Butland, B.K.; Anderson, H.R. and Maynard, R.L., 2018. Long‐term concentrations of nitrogen dioxide and mortality: A meta‐analysis of cohort studies. Epidemiology (Cambridge, Mass.). Vol. 29, No. 4, pp: 460-472.
2
Sherwood, B.; Cutler, D. and Burton, J.A., 2002. Wildlife and roads: the ecological impact. The Ecological Impact. Imperial College Press, London, England. pp: 118-124.
3
Bauwens, M.; Compernolle, S.; Stavrakou, T.; Müller, J.F.; Van-Gent, J.; Eskes, H.; Levelt, P.F.; Van-Der, R.; Veefkind, A.J.P.; Vlietinck, J.; Yu, H. and Zehner,
4
C., 2020. Impact of Coronavirus Outbreak on NO2 Pollution Assessed Using TROPOMI and OMI Observations. Geophysical Research Letters. Vol. 47, No. 11, pp: 1-16.
5
Beirle, S.; Platt, U.; Wenig, M. and Wagner, T., 2003. Weekly cycle of NO2 by GOME measurements: A signature of anthropogenic sources. Atmospheric Chemistry and Physics. Vol. 3, No. 6, pp: 2225-2232.
6
De Boor, G., 2004. Spline Toolbox (7th ed.). The MathWorks Inc., Natick, MA.
7
De-Foy, B.; Lu, Z. and Streets, D.G., 2016. Satellite NO2 retrievals suggest China has exceeded its NOx reduction goals from the twelfth five‐year plan. Scientific Reports. Vol. 6, No. 1, pp: 35-912.
8
Duncan, B.N.; Lamsal, L.N.; Thompson, A.M.; Yoshida, Y.; Lu, Z.; Streets, D.G.; Hurwitz, M.M. and Pickering, K.E., 2016. A space‐based, high‐resolution view of notable changes in urban NOx pollution around the world
9
(2005‐2014). Journal of Geophysical Research: Atmospheres. Vol. 121, pp: 976-996.
10
Gadsdon, S.R. and Power, S.A., 2009. Quantifying local traffic contributions to NO2 and NH3 concentrations in natural habitats. Environmental Pollution. Vol. 157, No. 10, pp: 2845-2852.
11
Gautam, S., 2020. COVID-19: air pollution remains low as people stay at home. Air Quality, Atmosphere, & Health, p.1.
12
Griffiths, J. and Woodyatt, A., 2020. Wuhan coronavirus: Thousands of cases confirmed as China goes into emergency mode. CNN. Available from edition CNN.com/2020/01/26/ asia/wuhancoronavirus‐update‐intl‐hnk/index.html.
13
Horowitz, J., 2020. Italy locks down much of the country's north over the coronavirus. The New York Times Retrieved from nytimes.com/2020/03/07/world/Europe/coro‐navirus italy.html, Accessed 25 April 2020.
14
Kaplan, G. and Avdan Z.Y., 2020. Short report covid-19: Spaceborne nitrogen dioxide over turkey. Eskişehir technical university journal of science and technology A applied sciences and engineering. Vol. 21, No. 2, pp: 251-255.
15
Leggett, T., 2020. Coronavirus: Global growth ‘could halve’ if outbreak intensifies. BBC. Retrieved bbc.com/news/ business‐51700935, Accessed 25 April 2020.
16
Newman, J.R.; Schreiber, R.K. and Novakova, E., 1992. Air Pollution Effects on Terrestrial and Aquatic Animals. Air Pollution Effects on Biodiversity. pp: 177-233.
17
Tan, P.H.; Chou, C.; Liang, J.Y.; Chou, C.K. and Shiu, C.J., 2009. Air pollution ‘holiday effect’ resulting from the Chinese New Year. Atmospheric Environment. Vol. 43, No. 13, pp: 2114-2124.
18
Turner, P.R., 2001. Guide to scientific computing. CRC press.
19
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثرات مسابقات اسب سواری بر توسعه گردشگری (مطالعه موردی: استان گلستان)
هدف پژوهش شناسایی عوامل مؤثر بر توسعه گردشگری اسب سواری استان گلستان بود. روش پژوهش از نوع آمیخته ترکیبی از روش کیفی و کمی است. روش نمونه گیری، هدفمند و در دسترس بود. درمرحله کیفی از طریق مصاحبه نیمه ساختار یافته، عوامل مؤثر بر توسعه گردشگری اسب سواری شناسایی شد. جامعه آماری در مرحله کیفی و کمی به ترتیب شامل 17 و 50 نفر از کارشناسان هیئت اسب دوانی، مربیان اسب دوانی، مالکین اسب، چابک سواران، تولیدکنندگان و پرورش دهندگان اسب، تماشاگران داخلی و خارجی بودند. ابزار پژوهش در این مرحله شامل پرسش نامه محقق ساخته 6 مؤلفه مدیریتی، زیرساختی، اقتصادی، فرهنگی و اجتماعی، سیاسی و زیست محیطی بود که در مجموع 32 سؤال جمع آوری شد. روایی محتوایی پرسش نامه به تایید تعدادی اساتید مدیریت ورزشی رسید که پایایی آن از طریق آلفا کرونباخ 0/82 محاسبه شد. پس از جمع آوری پرسش نامه داده ها در دو بخش توصیفی و استنباطی با استفاده از نرم افزار Spss نسخه 22 تجزیه و تحلیل شد. یافته های پژوهش نشان داد، میانگین رتبه ای برنامه ریزی استراتژیک توسعه گردشگری ورزش اسب دوانی (8/40)، امکانات تفریحی و ورزشی برای حفظ گردشگران (9/10)، فرصت های شغلی مختلف (7/58)، زنده نگه داشتن سنت های دیرینه و ملی (9/13)، همکاری بین ذینفعان داخلی و خارجی گردشگری (9/16) و محافظت از منابع طبیعی (8/62)، در جذب گردشگران و توسعه اسب دوانی تأثیر به سزایی دارد. برنامه ریزی گردشگری می تواند موجب تنوع اقتصادی و رونق فعالیت های اقتصادی به صورت سازمان یافته در حوزه گردشگری شده و زمینه توسعه گردشگران برای ورزش اسب دوانی را فراهم آورد. کاهش و رفع محدودیت ها بر میزان انگیزه و رضایت مندی گردشگران از ورزش اسب دوانی حاصل می شود.
http://www.aejournal.ir/article_121493_83191a525a4a15def4a36ff941392b81.pdf
2020-09-22
457
468
10.22034/aej.2020.121493
ورزش
اسب دوانی
گردشگر
استان گلستان
طیبه
یانپی
tayyebeh.yanpi1396@gmail.com
1
گروه مدیریت ورزشی، دانشکده تربیت بدنی و علوم ورزشی، دانشگاه مازتدران، بابلسر، ایران
LEAD_AUTHOR
صمد
فتاحی
fattahi.samad@yahoo.com
2
گروه مدیریت ورزشی، دانشکده تربیت بدنی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
یاسر
حیدری
yaserheydri@yahoo.com
3
گروه مدیریت ورزشی، دانشکده تربیت بدنی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
ابراهیمی دهکردی، ا.،1393. نقش عوامل فرهنگی، مذهبی و اکو توریستی در توسعه گردشگری ابرکوه. فصلنامه فضای گردشگری. دوره 3، شماره 9، صفحات 1 تا 16.
1
امینی، م.؛مهدی پور، ع. و قاسمی، ح.، 1396. تبیین شاخصهای تأثیرگذار موانع گردشگری ورزشی ایران با استفاده از روش AHP گروهی با تأکید بر نقش اطلاعاتی و ارتباطی. مدیریت ارتباطات در رسانه های ورزشی. دوره 4، شماره 15، صفحات 26 تا 35.
2
اندام، ر.؛ آقایی، ع.ا.؛ عنبریان، م. و پارساجو، ع.، 1393. راهکارهای توسعه توریسم ورزشی در استان همدان. پژوهش های معاصر در مدیریت ورزشی. دوره 4، شماره 7، صفحات 31 تا 44.
3
بلوری فرد، ا.؛ کاباران زاد قدیم، م.ر. و شالچیان رابع، ف.، 1396. بررسی تاثیر بهره مندی از توانمندی جوانان نخبه بومی در توسعه گردشگری و ارائه یک مدل از سیستم دانش محور با رویکرد توانمندسازی نخبگان بومی به منظور توسعه گردشگری- مطالعه موردی: استان بوشهر. فصلنامه فرهنگی و سیاسی خلیج فارس. دوره 4، شماره 12، صفحات 73 تا 91.
4
پورمحمدی، م.ر.؛ حسین زاده دلیر، ک.؛ قربانی، ر. و زالی، ن.، 1389. مهندسی مجدد فرآیند برنامهریزی با تأکید بر کاربرد آینده نگاری. جغرافیا و توسعه. شماره 30، صفحات 37 تا 58.
5
خسروی مهر، ح.؛ قدیری معصوم، م. و رضوانی، م.ر.، 1395. ارائه راهبردهای توسعه گردشگری ورزشی (مطالعه موردی: شهرستان مینودشت). پژوهش های کاربردی مدیریت ورزشی. دوره 5، شماره 3، صفحات 105 تا 115.
6
رحیم نیا، ف. و حسن زاده، ژ.،1390. ارزیابی استراتژیک قابلیت های گردشگری داخلی و ارتباطی استان خراسان رضوی. بررسی های بازرگانی. دوره 1، شماره 51، صفحات 16 تا 25.
7
زیتونلی،ع.؛ هنری،ح. و فراهانی، ا.،1390. شناسایی توانمندی های گردشگری ورزشی استان گلستان. پژوهش های مدیریت ورزشی و علوم حرکتی. دوره 1، شماره 1، صفحات 71 تا 83.
8
سیدعلیپور، س.خ. و اقبالی، ن.، 1390. نقش جاذبه های اکو توریستی، فرهنگی و تاریخی در توسعه گردشگری استان سمنان. فصلنامه جغرافیایی فضای گردشگری. دوره 1، شماره 1، صفحات 41 تا 61.
9
صداقتی، پ.؛ همتی نژاد، م.ع. و محرم زاده، م.، 1390. بررسی عوامل مؤثر بر توریسم ورزشی استان آذربایجان شرقی با تأکید بر جهت گیری صنعتی. مجموعه مقالات دومین همایش ملی تخصصی مدیریت ورزشی، دانشگاه شاهرود، صفحه 46.
10
فاضلی، ح.، 1391. ورزش و سیاست هویت. پژوهشنامه علوم سیاسی. دوره 2، شماره7، صفحات 74 تا 152.
11
قزلسفلو، ح.ر.؛ سفیری کلاته، م.؛ قربانزاده زعفرانی، س.ق، و چورلی، ع.، 1394. بررسی چالش های جذب گردشگر ورزشی در جشنواره بازی های بومی و سنتی استان گلستان (مطالعه موردی: مسابقات اسب دوانی و کشتی گورش). پژوهش نامه مدیریت ورزشی و رفتارحرکتی. دوره 11، شماره 22، صفحات 211 تا 218.
12
کارکن، ل.؛ زیتونلی، ع. و اسدی، ح.، 1392. تاثیر رویداد ورزشی اسب دوانی بر توسعه گردشگری ورزشی استان گلستان. رویکرد نوین در مدیریت ورزشی. شمارة 2، دوره 1، صفحات 9 تا 17.
13
محمدی، ت.؛ کریمی، م.؛ نجارزاده، ن، و شاه کرم اوغلی، م.، 1389. عوامل مؤثر بر تقاضای گردشگری در ایران. فصلنامه اقتصادی مالی. دوره 3، شماره 10، صفحات 114 تا 142.
14
محمودی یکتا، م. و ذبیحی، ا.، 1391. تأثیر مؤلفه های گردشگری بر گرایش گردشگران ورزشی به ایران. فصلنامه نگرش های نو در جغرافیای انسانی. دوره 4، شماره 2، صفحات 140 تا 149.
15
ممقانی، م.؛ خانی، ف.؛ سجاسی قیداری، ح. و فرخی سیس، س.، 1393. ارزیابی اثرات توسعه گردشگری فرهنگ محور در تغییرات اجتماعی- فرهنگی مقاصد روستایی (مطالعه موردی: بخش کن). مجله برنامه ریزی فضایی. دوره 4، شماره 2، صفحات 55 تا 78.
16
مولادوست، ک. و مقدسی، ر.، 1394. تبیین راه های توسعه صنعت اسب کاسپین مسئولیت های اساسی دولت. دامپزشکی و بهداشت. صفحات 25 تا 29.
17
مهدی زاده، ع.؛ طالب پور، م. و فتحی، م.، 1393. بررسی وضعیت گردشگری ورزشی در شهر مشهد براساس تحلیل SWOT. پژوهش های کاربردی در مدیریت ورزشی. دوره 2، شماره 8، صفحات 23 تا 36.
18
میرزایی کالار، س.م.؛همتی نژاد،م.ع. و رحمانی نیا، ف.، 1392. عوامل بازدارنده و سوق دهنده گردشگری ورزش. نشریه مدیریت و توسعه ورزش. سال 2، شماره 1، صفحات 85 تا 96.
19
نیک رفتار،ط.؛ حسینی،ا. و مقدم،ع.، 1396. شناسایی عوامل مؤثر بر جذب گردشگران پزشکی در ایران. نشریه مدیریت سلامت. دوره 20، شماره 67، صفحات 74 تا 64.
20
هنرور، ا.؛ مشرف جوادی، ب. و غفوری، ف.، 1384. عاملهای سوق دهنده گردشگران به رویدادهای ورزشی بین المللی برگزار شونده در کشور. نشریه المپیک. دوره 13، شماره 3، صفحات 51 تا 64.
21
Braz, J.I., 2002. Sport for all moves people around the globe, New perspective for tourism. Journal of Asian Sport for All. Vol. 1, pp: 47-52.
22
Cho, K.M., 2001. Developing Taekwondo as a Tourist Commodity. International Journal of Applied Sports Sciences. Vol. 2, No .13, pp: 53-63.
23
Claveria, O. and Torra, S., 2014. Forecasting tourism demand to Catalonia: Neural networks vs. time series models. Economic Modelling. Vol. 36, pp: 220-228.
24
Coulter, K., 2014. Herds and hierarchies: Class, nature, and the social construction of horses in equestrian culture. Society and Animals. Vol. 2, No, 22, pp: 135-152.
25
Dashper, K., 2012. Together, yet still not equal? Sex integration in equestrian sport. Asia-Pacific Journal of Health, Sport and Physical Education. Vol. 3, No. 3, pp: 213-225.
26
Emery, P., 2010. Past, present, future major sport event management practice: The practitioner perspective. Sport management review. Vol. 13, No. 2, pp: 158-170.
27
García, F.A.; Vázquez, A.B. and Macías, R.C., 2015. Resident's attitudes towards the impacts of tourism. TourismManagement Perspectives. Vol. 13, pp: 33-40.
28
George, R. and Frey, N., 2010. Creating change in responsible tourism management through social marketing. South African Journal of Business Management. Vol. 41, No. 1, pp: 11-23.
29
González-García, R.J., Añó-Sanz, V.; Parra-Camacho, D. and Calabuig-Moreno, F., 2018. Perception of residents about the impact of sports tourism on the community: Analysis and scale validation. Journal of Physical Education and Sport. Vol. 18, No. 1, pp: 149-156.
30
Hammer, M.; Bonow, M. and Petersson, M., 2017. The role of horse keeping in transforming peri-urban landscapes: A case study from metropolitan Stockholm, Sweden. Norsk Geografisk Tidsskrift-Norwegian Journal of Geography. Vol. 71, No. 3, pp: 146-158.
31
Hinch, T. and Higham, J., 2005. Sport, tourism and authenticity. European Sport Management Quarterly. Vol. 5, No. 3, pp: 243-256.
32
Hinch, T. and Ito, E., 2018. Sustainable sport tourism in Japan. Tourism Planning and Development. Vol. 15, No. 1, pp: 96-101.
33
Konyves, E. and Suta, E., 2009. The importance of equestrian tourism enterprises in tourism destination management in Hungary. APSTRACT: Applied Studies in Agribusiness and Commerce. 3 p.
34
Lamont, M.; Kennelly, M. and Wilson, E., 2012. Competing priorities as constraints in event travel careers. Tourism management. Vol. 33, No. 5, pp: 1068-1079.
35
Magalhães, N.; Barroco, C. and Antunes, J., 2015. Potential of Equestrian Tourism in Portugal. In 4th M-Sphere International Conference for Multidisciplinarity in Science and Business. pp: 125-130.
36
Martins, L.F.; Gan, Y. and Ferreira-Lopes, A., 2017. An empirical analysis of the influence of macroeconomic determinants on World tourism demand. Tourism Management. Vol. 61, pp: 248-260.
37
Mason, C.; Gos, L. and Moretti, A., 2016. Motivations, perceived risk and behavioral intentions in hard adventure tourism. A natural park case study, italian journal of management. Vol. 34, No. 100, pp: 181- 199.
38
Miranda, J. and Andueza, J., 2005. The role of sport in the tourism destinations chosen by tourists visiting Spain. Journal of Sport & Tourism. Vol. 10, No. 2, pp: 143-145.
39
Ollenburg, C., 2005. Worldwide structure of the equestrian tourism sector. Journal of Ecotourism. Vol. 4, No, 1, pp: 47-55.
40
Pickel-Chevalier, S., 2015. Can equestrian tourism be a solution for sustainable tourism development in France? Loisir et Société/Society and Leisure. Vol. 38, No. 1, pp: 110-134.
41
Roult, R.; Lavigne, M.A. and Auger, D., 2017. The horse racing industry in Canada: current status and prospects. Managing Sport and Leisure. Vol. 22, No. 1, pp: 19-32.
42
Shi, H., 2012. The efficiency of government promotion of inbound tourism: The case of Australia, Journal of Economic Modelling. Vol. 29, pp: 2711-2721.
43
Sigurðardóttir, I. and Steinthorsson, R.S., 2018. Development of micro-clusters in tourism: a case of equestrian tourism in northwest Iceland. Scandinavian Journal of Hospitality and Tourism. pp:1-17.
44
Solberg, H. and Preuss, H., 2007. Major sport events and long-term tourism impacts. Journal of sport Management. Vol. 21, pp: 213-234.
45
Törn, A.; Tolvanen, A.; Norokorpi, Y.; Tervo, R. and Siikamäki, P., 2009. Comparing the impacts of hiking, skiing and horse riding ontrail and vegetation in different types of forest. Journal of Environmental Management. Vol. 90, No. 3, pp: 1427-1434.
46
Whinam, J., and Comfort, M., 1996. The impact of commercial horse riding on sub-alpine environments at Cradle Mountain, Tasmania, Australia. Journal of Environmental Management. Vol. 47, No. 1, pp: 61-70.
47
Woo-Sik Choi, D.J.; Shonk, D. and Bravo, G., 2016. Development of a Conceptual Model in International Sport Tourism: Exploring Pre-and Post- Consumption Factors, International Journal of Sport Management Recreation & Tourism. Vol. 21, pp: 21-47.
48
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی خواص ضدباکتریایی عصاره های استخراج شده از جلبک سبز Ulva fasciata نمونه گیری شده از سواحل خلیج فارس
جلبک ها دارای تنوع و گستردگی فراوانی هستند ازجمله مهم ترین خواص آن ها به خصوص جلبک های سبز وجود خاصیت آنتی اکسیدانی و آنتی باکتریال بالای عصاره های استخراج شده از آن ها است، ترکیبات استروئیدی، فلاونوئیدی و تریپنوئیدی از جلبک های مختلف جداسازی شده است. وفور وجود جلبک ها و استفاده از ترکیبات آنتی باکتریال طبیعی جایگزین داروهای دست ساز و مصنوعی حائز اهمیت است. مطالعه اثربخشی این ترکیبات به عنوان مهارکننده رشد باکتری ها به خصوص باکتری های پاتوژن انسانی و مولد فساد غذایی از مهم ترین علل انجام این مطالعه بوده است. بر این اساس فرکشن های استخراج شده از جلبک سبز Ulva fsciata با استفاده از دستگاه کروماتوگرافی گازی قابل حل در حلال استونی ارزیابی شد و تاثیر آن بر روی باکتری های ترکیبات استخراج شده به ترتیب میزان فراوانی و غلظت شامل اوراسیک اسید و فیتول بود. خاصیت آنتی باکتریال عصاره های استخراج شده از جلبک سبز Ulva fasciata جمع آوری شده به روش غواصی از منطقه خلیج فارس بود که به روش in vitro ارزیابی شد. حداقل غلظت ممانعت کنندگی، (MIC) و حداقل غلظت کشندگی (MBC) در باکتری گرم مثبت (Staphylococcus aureus و Bacillus subtilis) و باکتری های گرم منفی (Escherchia coliوSalmonella typhi) ارزیابی شد که بیش ترین اثر مهار کنندگی رشد، 50 میکروگرم/میلی لیتر مربوط به S. aureus و هم چنین بیش ترین غلظت کشندگی، 300 میکروگرم/میلی لیتر برای B. subtilis به دست آمد. نتایج حاصل از این مطالعه نشان داد که عصاره استخراج شده از جلبک سبز Ulva fasciata دارای خواص ضد باکتریایی هست.
http://www.aejournal.ir/article_121633_38bfcb17f9e1e5a6a302031f238f1ffa.pdf
2020-09-22
469
474
10.22034/aej.2020.121633
جلبک سبز
خواص ضدباکتریایی
عصاره
خلیج فارس
رستا
عزیزی
rasta.a9069@yahoo.com
1
گروه بهداشت مواد غذایی، دانشکده دامپزشکی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
عباسعلی
مطلبی
motalebi@ifro.com
2
گروه بهداشت مواد غذایی، دانشکده دامپزشکی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
ملیکا
ناظمی
melikanazemi@yahoo.com
3
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
مصطفی
شریف روحانی
mostafasharif@yahoo.com
4
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
محمد
افشارنسب
mafsharnasab@yahoo.com
5
موسسه آموزش عالی خرد، بوشهر، ایران
AUTHOR
طاهری، م.؛ ایران دوست، خ.؛ یوسفی، س. و جمالی، ا.، 1396. تأثیر هشت هفته برنامه تمرینی تحمل وزن اندام تحتانی و مصرف زیاد کافئین بر زمان واکنش زنان یائسه. نشریه سالمند. دوره 12، شماره 1، صفحات 18 تا 29.
1
فرهادیان، ا. و جعفری، ا.، 1394. تاثیرات سختی محیط کشت بر خالص سازی و تشکیل کلونی در جلبک سبز Scenedesmus quadricauda. مجله پژوهش های گیاهی. دوره 28، شماره 5، صفحات 1066 تا 1076.
2
غفاری، م.؛ طاهری، ع. و پولادی، س.، 1397. بررسی خواص ضد میکروبی جلبک Dictyitacervicornis علیه چند سویه باکتری. مجله دانشگاه علوم پزشکی سبزوار. دوره 25، شماره 2، صفحات 241 تا 249.
3
Attaway, J.A.; Wolford, R.W.; Dougherty, M.H. and Edwards, G.J., 1967. Methods for the determination of oxygenated terpene, aldehyde, and ester concentrations in aqueous citrus essences. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 15, No. 4, pp: 688-692.
4
Chandrasekaran, S.; Zhang, J.; Xiao, W.; Qian, F.; Zhu, C. and Li, Y., 2019. Efficient 3D printed pseudo capacitive electrodes with ultrahigh MnO2 loading. Joule. Vol. 3, No. 2, pp: 459-470. Hange. Vol. 36, No. 4, pp: 233-251.
5
Chuang, R.Y.; Johnson, K.M.; Wu, Y.M.; Ching, K.E. and Kuo, L.C., 2013. A midcrustal ramp‐fault structure beneath the Taiwan tectonic wedge illuminated by the 2013 Nantou earthquake series. Geophysical Research Letters. Vol. 40, No. 19, pp: 5080-5084.
6
Çitoğlu, G.S.; Acıkara, Ö.B.; Yılmaz, B.S. and Özbek, H., 2012. Evaluation of analgesic, anti inflammatory and hepatoprotective effects of licorice from Sternberg fisherman (Herbert) Rupr. Fitoterapia. Vol. 83, No. 1, pp: 81-87.
7
Derakhshesh, M.R.; Sina, H. and Nazemi, H., 2011. The comparison of the microstructure and hardness of Al-B and Al-Mg-B composites.
8
Hillary, F.G., 2011. Determining the nature of prefrontal cortex recruitment after traumatic brain injury: a response to Turner. Frontiers in systems neuroscience. Vol. 5, 24 p.
9
Hunang, C.; Lyu, W.; Lu, J. and Liu, G., 2014. Optimizing adsorption of Cu (II) using carboxyl methyl chitosan bentonite compound adsorbent by response surface methodological approach. Journal of Anhui Agricultural University. Vol. 41, No. 3, pp: 479-484.
10
Jahandideh, S.; Kendall, E.; Low-Choy, S.; Donald, K.; Jayasinghe, R. and Barzegari, E., 2019. The Process of Patient Engagement in Outpatient Cardiac Rehabilitation programs. Behavior C Yao, B.,
11
Katlama, C.; Esposito, R.; Gatell, J.M.; Goffard, J.C.; Grinsztejn, B.; Pozniak, A. and Parys, W., 2007. Efficacy and safety of TMC114/ritonavir in treatment-experienced HIV patients: 24-week results of POWER 1. Aids. Vol. 21, No. 4, pp: 395-402.
12
Kim, S.K. and Wijesekara, I., 2011. Anticoagulant effect of marine algae. In Advances in food and nutrition research Academic Press. Vol. 64, pp: 235-244.
13
Kumar, A.K.; Sharma, S.; Patel, A.; Dixit, G. and Shah, E., 2019. Comprehensive evaluation of microalga based dairy effluent treatment process for clean water generation and other value added products. International journal of phytoremediation. Vol. 21, No. 6, pp: 519-530.
14
Lekshmi, N.; Joseph, I.; Ramamurthy, T. and Thomas, S., 2018. Changing facades of Vibrio cholerae: An enigma in the epidemiology of cholera. The Indian journal of medical research. Vol. 147, No. 2, pp: 133-138.
15
Peymani, E.; Grip, H.F.; Saberi, A.; Wang, X. and Fossen, T.I., 2014. H∞ almost output synchronization for hetero geneous networks of introspective agents under external disturbances. Automatica. Vol. 50, No. 4, pp: 1026-1036.
16
Qiao, L.; Chen, S. and Tan, X., 2010. Sparsity preserving discriminant analysis for single training image face recognition. Pattern Recognition Letters. Vol. 31, No. 5, pp: 422-429.
17
Stokkeland, R., 2017. Using differential pressure and image processing for cuttings transportation measurements (Master's thesis, University of Stavanger, Norway).
18
Taskin, L.; Al-Amoudi, I. and Vincent, S., 2018. Sub theme 26: Humanizing Management: Foundations, Precautions, and Prospects.
19
Zhu, J.S.; Cao, J.M.; Cain, X.L. and Yan, Z.Q., 2004. The structure of lithosphere in Eurasia and west Pacific. Advance in Earth Sciences. Vol. 19, No. 3, pp: 387-392.
20
ORIGINAL_ARTICLE
برآورد غلظت کلروفیل A با استفاده از سنجش از دور و اندازه گیری میدانی در تالاب چغاخور
بهره برداری از منابع آب مستلزم شناخت کیفیت آب می باشد، زیرا منابع آب دریافت کنندگان نهایی آلودگی به دست آمده از فعالیت های انسانی هستند. هدف از این مطالعه، بررسی خصوصیات کیفی آب تالاب چغاخور واقع در استان چهارمحال و بختیاری با استفاده از بررسی های میدانی و نیز اندازه گیری کلروفیل A با استفاده از تصاویر ماهواره ای و بررسی همبستگی بین مقادیر کلروفیل حاصل از تصویر ماهواره ای و اندازه گیری میدانی می باشد. بدین منظور کیفیت آب تالاب چغاخور با استفاده از روش آزمایشگاهی و میزان کلروفیل A با استفاده از شاخص NDCI و آزمایش مورد ارزیابی قرار گرفت. پارامترهای مورد بررسی در نمونه برداری آزمایشگاهی شامل DO، EC، pH، TDS، TSS، کلروفیل A، نیترات، عمق آب، دمای محیط و دمای آب بود. نمونه برداری از 4 ایستگاه در تالاب چغاخور انجام شد و کلیه آزمایشها 24 ساعت بعد از نمونه برداری در آزمایشگاه صورت گرفت. تجزیه و تحلیل داده ها و مقایسه میانگین ها با استفاده از آنالیز واریانس دوطرفه و آزمون چند دامنه ای دانکن در سطح معنی دار 5 درصد انجام شد. میزان همبستگی مقادیر کلروفیل A با مقادیر حاصل از نمونه برداری آب بررسی شد. به طورکلی، نتایج همبستگی معنی داری را بین مقادیر حاصل از نمونه برداری و مقادیر تخمین زده شده توسط NDCI، برای غلظت کلروفیل A نشان میدهد (0/92=R2) و این بدین معناست که می توان از تصاویر ماهواره ای برای تخمین میزان غلظت کلروفیل A استفاده کرد.
http://www.aejournal.ir/article_121648_09ace7456f4824a32b9174b59ce94682.pdf
2020-09-22
475
486
10.22034/aej.2020.121648
سنجش از دور
کلروفیل a
کیفیت آب
تالاب
مهسا
کنارکوهی
mahsa.kenarkoohi@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، واحد اصفهان (خوراسگان)، دانشگاه آزاد اسلامی، اصفهان، ایران
AUTHOR
مژگان
احمدی ندوشن
m.ahmadi1984@gmail.com
2
گروه محیط زیست، واحد اصفهان (خوراسگان)، دانشگاه آزاد اسلامی، اصفهان، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد هادی
ابوالحسنی
hadi.mha2001@yahoo.com
3
گروه محیط زیست، واحد اصفهان (خوراسگان)، دانشگاه آزاد اسلامی، اصفهان، ایران
AUTHOR
جعفری، م.؛ زهتابیان، غ. و احسانی، ا.، 1392. بررسی تغییرات اراضی بیابانی با استفاده از داده های سنجش از دور مطالعه موردی: کاشان. فصلنامة تحقیقات مرتع و بیابان ایران. دوره 20، شماره 3، صفحات 644 تا 652.
1
حاجی زاده ذاکر، ن.، 1386. خصوصیات کلروفیل a و تغییرات فصلی آن در فلات قاره جنوبی دریای خزر. مجله محیط شناسی. شماره 45، صفحات 45 تا 52.
2
رحیمی بلوچی، ل.؛ زرعکار، آ. و ملک محمدی، ب.، 1391. بررسی تغییرات زیست محیطی با استفاده از سنجش از دور و شاخص کیفیت آب (مطالعۀ موردی: تالاب بین المللی شادگان). مجله کاربرد سنجش از دور و GIS در علوم منابع طبیعی. شماره 4، صفحات 43 تا 55.
3
شاپوری، م. و جوانشیر، آ.، 1388. بررسی میزان توده زنده کلروفیل a در دهانه رودخانه تجن. مجله بیولوژی دریا. دوره 1، شماره 3، صفحات 78 تا 88.
4
شکوهی، ر.؛ حسین زاده، ا.؛ روشنایی، ق.؛ علی پور، م. و حسین زاده، س.، 1390. بررسی کیفیت آب دریاچه سد آیدغموش با استفاده از شاخص کیفیت آب (NSFWQI) و بیلان مواد مغذی. مجله سلامت و محیط. شماره 40، صفحات 439 تا 450.
5
عبادتی، ن. و هوشمندزاده، م.، 1393. بررسی کیفیت آب رودخانۀ دز در ایستگاه آبسنجی دزفول. اکوهیدرولوژی. شماره 2، صفحات 69 تا 81.
6
عباسی کسبی، ع.؛ داداللهی، س.؛ محمدعسگری، ح.؛ نبوی، م.ب. و علمی زاده، ه.، 1396. مدل سازی پراکنش گونه های ماکروبنتیک منطقه جزر و مدی رودخانه بهمنشیر با استفاده از سیستم اطلاعات جغرافیایی و سنجش از دور. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 2، صفحات 243 تا 250.
7
فاطمی، س.ب. و رضایی، ی.، 1385. مبانی سنجش از دور. انتشارات آزاده. تهران. 350 صفحه.
8
فتحی، پ.؛ ابراهیمی، ع.؛ میرغفاری، ن. ا. و اسماعیلی، ع. ر.، 1392. ارزیابی کیفی آب تالاب چغاخور با استفاده از شاخصهای BMWP و ASPT. مجله منابع طبیعی. دوره 66، شماره 1، صفحات 81 تا 93.
9
فتحی، پ.؛ ابراهیمی، ع. و میرغفاری، ن.، 1395. ارزیابی زیستی تالاب چغاخور با استفاده از درشت بیمهرگان. بوم شناسی کاربردی. شماره 15، صفحات 77 تا 89.
10
موسوی ده موردی، ل. و بنایی، م.، 1397. تخمین و مدل سازی کلروفیل آ با استفاده از ماهواره لندست 8 در آب های ساحلی دیلم. مجله زیست شناسی دریا. سال 10، شماره 38، صفحات 21 تا 29.
11
Ayeni, A.O. and Adesalu, T.A., 2018. Validating chlorophyll-a concentrations in the Lagos Lagoon using remote sensing extraction and laboratory fluorometric methods. MethodsX. Vol. 5, pp: 1204-1212.
12
Abdelmalik, K.W., 2018. Role of statistical remote sensing for Inland water quality parameters prediction. The Egyptian Journal of Remote Sensing and Space Sciences. Vol. 21, No. 2, pp: 193-200.
13
Chawira, M.; Dube, T. and Gumindoga, W., 2013. Remote sensing based water quality monitoring in Chivero and Manyame lakes of Zimbabwe. Physics and Chemistry of the Earth. Vol. 66, pp: 38-44.
14
Haji Gholizadeh, M.;Melesse, A.M. and Reddi, L., 2016. A Comprehensive Review on Water Quality Parameters Estimation Using Remote Sensing Techniques. Sensors. Vol. 16, No. 8, pp: 1-43.
15
Howarth, R.W., 1988. Nutrient limitation of net primary production in marine ecosystems. Annual Review of Ecology and Systematics. Vol. 19, pp: 89-110.
16
Li, X.; Manman, C. and Anderson, B.C., 2009. Design and performance of a water quality treatment wetland in a public park in Shanghai, China. Ecological Engineering. Vol. 35, pp: 18-24.
17
Mohamed, M.F., 2015. Satellite data and real time stations to improve water quality of Lake Manzalah. Water Science. Vol. 29, pp: 68-76.
18
Masocha, M.; Murwira, A.; Magadza, C.H.D.; Hirji, R. and Dube, T., 2017. Remote sensing of surface water quality in relation to catchment condition in Zimbabwe. Physics and Chemistry of the Earth. Vol. 100, pp: 13-18.
19
Mishra, S. and Mishra, R., 2012. Normalized difference chlorophyll index: A novel model for remote estimation of chlorophyll-a concentration in turbid productive waters. Remote Sensing of Environment. Vol. 117, pp: 394-406.
20
Mushtaq, F. and Nee Lala, M.G., 2016. Remote Estimation of Water Quality Parameters of Himalayan Lake (Kashmir) using Landsat 8 OLI Imagery. Geocarto International. Vol. 32, pp: 274-285.
21
Nemati varnosfaderany, M.; Mirghaffary, N.; Ebrahimi, E. and Saffianian, A., 2008. Water quality assessment in an arid region using a water quality index. Water Science and Technology. Vol. 60, No. 9, pp: 2319-2327.
22
Subiyanto, S.; Ramadhanis, Z. and Hafidh Baktiar, A., 2018. Integration of remote sensing technology using Sentinel-2A Satellite images for fertilization and water pollution analysis in Estuaries Inlet of Semarang Eastern Flood Canal. E3S Web of Conferences. Vol. 31, pp: 1-6.
23
Watanabe, F.; Alcântara, E.; Rodrigues, T.; Rotta, L.; Bernardo, N. and Imai N., 2017. Remote sensing of the chlorophyll-a based on OLI/Landsat-8 and MSI/Sentinel-2A (Barra Bonita reservoir, Brazil). Annals of the Brazilian Academy of Sciences. Vol. 31, pp: 1-14.
24
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر نانوذرات آهن در میزان برخی از محصولات جلبک دونالیلا سالینا (Dunalliela salina)
به منظور بررسی اثر نانو ذرات آهن بر روی جلبک دونالیلا سالینا به عنوان یکی از گونه های با ارزش آبزی در برخی از دریاچه های آب شور ایران، با هدف تغییر در تولید برخی از محصولات فتوسنتزی (تحت شرایط ثابت نور، دما و pH ) این تحقیق انجام شد. تهیه نمونه از مرکز تحقیقات تولید و پرورش آرتمیا در استان کرمان، انجام شد و تحت شرایط استاندارد به گروه پژوهشی شیلات و آلاینده های آبی خزر (کاسپین) انتقال داده شد و پس از جداسازی، خالص سازی و کشت در محیط جانسون پیشرفته برای سایر بررسی ها آماده شد. 3 تیمار برای مدت 12 روز و هر کدام با سه تکرار تحت تاثیر دزهای مختلف نانوذرات آهن (0/075، 0/75 و 7/5 میلی گرم بر لیتر) قرار داده شد و با نمونه شاهد با استفاده از نرم افزار SPSS-V18 مقایسه شد. نتایج حاصل نشان از تاثیر نانوذرات بر روی مقادیر کلروفیل a و b می باشد و نشان داد که نسبت به نمونه شاهد تغییرات معنی دار است (P≤0.05). میزان بتا کاروتن و گلیسرول (هر سه تیمار) نیز تغییرات معنی دار است (P≤0.05). به نظر می رسد که غلظت های مختلف نانوذرات می تواند باعث تغییر در میزان برخی تولیدات فتوسنتزی جلبک دونالیلا و افزایش برخی محصولات با ارزش مانند گلیسرول و بتاکاروتن شود.
http://www.aejournal.ir/article_121663_34a33aa494d3a7825a72b9df159c2a0e.pdf
2020-09-22
487
492
10.22034/aej.2020.121663
میکرو جلبک دونالیلا
نانوذرات آهن
بتاکاروتن
گلیسرول و کلروفیل
حمید
رمضانی
hamid_ramzani@yahoo.com
1
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران
LEAD_AUTHOR
علی
گنجیان خناری
aganjian2002@yahoo.com
2
گروه پژوهشی شیلات و آلاینده های آبی خزر (کاسپین)، وزارت علوم تحقیقات و فن آوری، ساری، ایران
AUTHOR
محمد
قدیری ابیانه
m.ghadiri.a41@gmail.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
آیت الله زاده شیرازی، م.س.؛ شریعتی، ف.؛ کشاورز، ع. و رمضان پور، ز.؛۱۳۹۲. اثر سمیت نانو ذره Al203 بر روی جلبک دونالیلا سالینا Dunaliella salina. شانزدهمین همایش ملی بهداشت محیط. تبریز، دانشگاه علوم پزشکی تبریز، دانشکده بهداشت.
1
بهشتی فر، س.، 1390. اثر تیتانیوم و تولید رنگیزه های فتوسنتزی جلبک تک سلولی Dunaliella salina پایان نامه کارشناسی ارشد زیست شناسی، علوم گیاهی گرایش فیزیولوژی گیاهی. دانشکده علوم، دانشگاه اصفهان. 110 صفحه.
2
پورافراسیابی، م.؛ ایمانپور، ج.؛ رمضان پور، ن. و صادقی راد، ح.، 2013. تأثیر شدت و دوره نوری بر نرخ رشد و سنتز چربی در جلبک سبز Dunaliella salina. مجله بهره برداری و پرورش آبزیان. دوره 2، شماره 3، صفحات 63 تا 75.
3
حسین زاده، خ.؛ گنجیان خناری، ع. و جعفری، س.، 1393. بررسی تاثیر غنی سازی آب حوضه جنوبی دریای خزر بر پارامترهای رشد ریز جلبک Spirulina platensis. تغذیه و بیوشیمی آبزیان. دوره 1، شماره 1، صفحات 71 تا 81.
4
شرفی، ش. و غیاثوند، ن.، 1378. جلبک سوخت آینده. ترجمه از کتاب Algae fuel for future. مجله دانشمند. دوره 36، شماره 4، صفحات 36 تا 40.
5
قاسمی، ح.؛ مظاهراسدی، م. و کیانی راد، م.، 1379. بررسی میزان گلیسرول در جلبکDunliella salin . مجله پژوهش و سازندگی. دوره 13، شماره 4، صفحات 84 تا 88..
6
قاسمی، ی.، 1393. بررسی اثرات نانوذرات نقره بر رشد، متابولیسم و محتوای لیپیدی و رنگدانه ای ریزجلبک Dunalliela salina. دانشگاه تحصیلات تکمیلی صنعتی کرمان. 120صفحه.
7
گنجیان خناری،ع.، 1389. کشت جلبک. گروه پژوهشی شیلات و آلاینده های آب خزر. 24 صفحه.
8
میری، م. و خندان بارانی، ه.، 1395. تاثیر نانوذره اکسید مس بر رشد، مقدار پروتئین، کلروفیل ها و کاروتن جلبک Chlorella vulgaris. مجله پژوهش های گیاهی. دوره 29، شماره 1، صفحات 235 تا 242.
9
مقدسی، ز.؛ امتیازجو، م.؛ ربانی، م.؛ لپبی، ف.؛ اذن اله، آ. و نریمان، م.، 1390. مطالعه اثر ضدسرطانی عصاره اتانولی جلبک سبز Dunaliella salina جدا شده از دریاچه حوض سلطان بر رده سلولی Squamous cell carcinoma در شرایط آزمایشگاهی. فصلنامة تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران. جلد 27، شماره 2، صفحات 306 تا 315.
10
Borowitzka, L.J.; Borowitzka, M.A. and Moulton, T.P., 1984. The mass culture of Dunaliellasalina for fine chemicals: from laboratory to pilot plant. Hydrobiologia. Vol. 116, No. 1, pp: 115-121.
11
Kadar, E.; Rooks, P.; Lakey, C. and White, D.A., 2012. The effect of engineered iron nanoparticles on growth and metabolic status of marine microalgae cultures. Science of the Total Environment. Vol. 439, pp: 8-17.
12
Kop, A. and Durmaz, Y., 2008. The effect of synthetic and natural pigments on the colour of the cichlids (Cichlasoma severum sp. Aquaculture. Vol. 16, pp: 117-122.
13
Miki, W., 1991. Biological functions and activities of animal carotenoids. Pure & Applied Chemisrty. Vol. 63, No. 1, pp: 141-146.
14
Pádrová, K.; Lukavský, J.; Nedbalová, L.; Čejková, A.; Cajthaml, T.; Sigler, K.; Vítová, M. and Řezanka, T., 2015. Trace concentrations of iron nanoparticles cause overproduction of biomass and lipids during cultivation of cyanobacteria and microalgae. Journal of Applied Phycology. Vol. 27, No. 4, pp: 1443-1451.
15
Raja, R.; Hemaiswarya, S. and Rengasamy, R., 2007. Exploitation of Dunaliella for β carotene production. Appl. Microbial Biotechnal. Vol. 74, pp: 517-523.
16
Young-Chul, L.; Kyubock, L. and You-Kwan, O., 2015. Recent nanoparticleengineering advances in microalgal cultivation andharvesting processes of biodiesel production: A review. Bioresource technology. Vol. 184, pp: 63-72.
17
ORIGINAL_ARTICLE
شناخت باکتری های عامل ایجاد عفونت ادراری در زنان باردار شهر آبادان و بررسی مقاومت آنتی بیوتیکی این باکتری ها
تغییرات فیزیولوژیک ناشی از تغییرات هورمونی در هنگام حاملگی، به تغییر ترکیبات شیمیائی ادرار و تسهیل در رشد میکروارگانیسم ها منجر می گردد. هدف از این مطالعه، بررسی میزان شیوع باکتریوری و ارتباط آن با برخی از متغیرهای دموگرافیک در زنان باردار مراجعه کننده به آزمایشگاه دکتر صحتی شهرستان آبادان بوده است. برای تهیه نمونه، از روش جمع آوری ادرار میانه استفاده گردید و آنالیز نمونه های ادرار با استفاده از تست های بیوشیمیایی، کشت میکروبی و آنتی بیوگرام صورت گرفت. نتایج نشان داد که 54/4% زنان باردار دارای پیوری و 28/8% دارای باکتریوری می باشند. بررسی فاکتورهای مختلف نشان داد بین میزان باکتریوری با سن، میزان تحصیلات، سابقه دیابت و سابقه مصرف دارو ارتباط معنی داری وجود ندارد. نتایج نشان داد که تقریباً نیمی از زنان باردار دارای سابقه عفونت ادراری بوده و دفع پروتئین در افراد بیمار بیش تر بود. در این مطالعه خانواده استافیلوکوکاسه بیش ترین عامل مسبب عفونت مجاری ادراری گزارش شد که بعد از آن به ترتیب خانواده استرپتوکوکاسیه و خانواده انتروباکتریاسه قرار دارند. بررسی مقاومت آنتی بیوتیکی نشان داد که در حالت باکتریوری، باکتری ها بیش ترین مقاومت را نسبت به آنتی بیوتیک های کلیندامایسین، تتراسایکلین، آزیترومایسین و سفوکسیتین و بیش ترین حساسیت را نسبت به آنتی بیوتیک های جنتامایسین، نیتروفورانتوئین، آمپیسیلین و کوتریماکسازول دارند. باکتری های جدا شده از نمونه ها در محیط کشت طبق متد آنتی بیوگرام، مقاومت شان بررسی شده است. طبق این بررسی، زنان باردار واقع در سه ماهه سوم بیش تر مستعد ابتلا به عفونت مجاری ادراری بودند و پارامترهای دموگرافیک اثر معنی داری در ابتلای به عفونت ادراری در زنان باردار نداشت.
http://www.aejournal.ir/article_121691_2a142b60083e7d74c3b098f545fad5af.pdf
2020-09-22
493
500
10.22034/aej.2020.121691
زنان باردار
باکتریوری
آنتی بیوگرام
مقاومت آنتی بیوتیکی
استافیلوکوکاسه
فروغ
دهداری
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، واحد دزفول، دانشگاه آزاد اسلامی، دزفول، ایران
AUTHOR
مسرور
ذاکری نسب
m.zakeri_mzn@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم نوین، واحد پزشکی تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
زهرا
خشنود
zkhoshnood@gmail.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، واحد دزفول، دانشگاه آزاد اسلامی، دزفول، ایران
LEAD_AUTHOR
Akinloye, O.; Ogbolu, D.O.; Akinloye, O.M. and Terry, O.A., 2006. Asymptomatic bacteriuria of pregnancy in Ibadan. Journal of Biomedical Science. Vol. 63, pp: 109-112.
1
Alemu, A.; Moges, F.; Shiferaw, Y.; Tafess, K.; Kassu, A. and Anagaw, B., 2012. Bacterial profile and drug susceptibility pattern of urinary tract infection in pregnant women at University of Gondar Teaching Hospital, Northwest Ethiopia. Biomedical Research. No. 5, 197 p.
2
Buckley, R.M.; McGuckin, M. and MacGregor, R.R., 1978. Urine bacterial counts after sexual intercourse. New England Journal of Medical Science. Vol. 298, pp: 321-324.
3
Daneshyar, A.; Musavi Bahar, H. and Alikhani, M.Y., 2010. Study of the relation between unsymptomized urinary tract infection with some demographic parameters in pregnant women referred to sanitary centers of Bahar city in Hamedan province. Scientific Journal of Ilam Medical Science. Vol. 18, No. 3, pp: 89-95.
4
Delzell, J.E. and Lefevre, M.I., 2000. Urinary tract infections during pregnancy. American Family Journal of Physician. Vol. 61, pp: 713-720.
5
Hamdan, H.Z.; Ziad, A.H.M.; Ali, S.K. and Adam, I., 2011. Epidemiology of urinary tract infections and antibiotics sensitivity among pregnant women at Khartoum north hospital. Annals of Clinical Journal of Microbiology and Antimicrobiology. Vol. 10, pp: 1-5.
6
Irajian, G.; Boroomand, M. A.; Rashed Marandi, F.; Rahbar, M.; Shahcheraghi, F. and Sharifi, M., 2012. Test performance standard of antimicrobial sensitivity using disc diffusion method. Tehran Pres Pubication Center. 132 p.
7
John, N. and Miller, A., 2003. UK multicentre study of the antimicrobial susceptibility of bacterial pathogens causing urinary tract infection. Journal of Infection. Vol. 46, pp: 94-100.
8
Lawani, E.U.; Tolulope, A. and Deborah, O., 2015. Urinary tract infection amongst pregnant women in Amassoma, Southern Nigeria. African Journal of Microbiological Research. Vol. 9, pp: 355-359.
9
Martins, A.; Hunyadi, A. and Amaral, L., 2013. Suppl 1: Mechanisms of Resistance in Bacteria: An Evolutionary Approach. Open Journal of Microbiology. Vol. 7, pp: 53-58.
10
Mireles, A.L.F.; Walker, J.N.; Caparon, M. and Hultgren, S.J., 2015. Urinary tract infections: epidemiology, mechanisms of infection and treatment options. Nature Reviews of Microbiology. Vol. 13, pp: 269-284.
11
Okonko, I.O.; Ijandipe, L.A.; Ilusanya, O.A.; Donbarye Emmanuel, O.B.; Ejembi, J. and Udeze, A.O., 2009. Incidence of urinary tract infection (UTI) among pregnant women in Ibadan, Southern Western Nigeria. African Journal of Biotechnology. Vol. 8, pp: 6649-6657.
12
Onuh, S.O.; Umeora, O.U.; Igberase, J.; Azikem, M. and Okpere, E.E., 2006. Microbiological isolates and sensitivity pattern of urinary tract infection in pregnancy in Benin City, Nigeria. E bonyi Journal of MedicalScience. Vol. 5, pp: 48-52.
13
Raefi, A.; Amiri Kojoori, S.; Radjabi, M. H.; Naghipour, A.; Mokarari, S. and Arab Sarhadi, N., 2016. Study of Prevalence and Antibiotic sensitivity pattern of bacterial agents isolated from urinary tract infections of outpatients patients referred to Shohada hospital of Gonbad city. Quarterly Journal of Student Research Communication. Vol. 19, No. 61, pp: 56-67.
14
Sussman, M.H.J., 1998. Topley and Wilson’s Microbiology and Microbiol infections. 9th ed. Newcastle upon Tyne. Arnold.
15
Tadesse, E.; Teshome, M.; Merid, Y.; Kibret, B. and Shimelis, T., 2014. Asymptomatic urinary tract infection among pregnant women attending the antenatal clinic of Hawassa Referral Hospital, Southern Ethiopian Journal of Biomedical Research. No. 7, 155 p.
16
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر ضدمیکروبی نانو ذرات اکسیدآهن اصلاح شده با آلژینات بر بیوفیلم باکتری سودوموناس آئروژینوزا
سودوموناس آئروژینوزا یکی از عوامل مهم عفونت های بیمارستانی است و متاسفانه مقاومت آنتی بیوتیکی در این باکتری به واسطه وجود ژن های مقاومت، حضور پمپ های افلاکس و تشکیل بیوفیلم بسیار بالا می باشد. از اهداف این مطالعه بررسی اثرات نانوذره اکسید آهن اصلاح شده با آلژینات در برابر بیوفیلم سودوموناس آئروژینوزا می باشد. در این مطالعه نانوذره اکسید آهن اصلاح شده با پوشش آلژینات به روش هم رسوبی سنتز شد. ویژگی های ساختاری نانوذرات توسط روش های DLS، FT-IR، XRD و SEM تعیین شد. اثر ضدمیکروبی نانوذرات توسط بررسی حداقل غلظت مهاری به روش میکرودایلوشن براث پس از ارزیابی شدت بیوفیلم سویه های بالینی به روش میکروتیترپلیت ارزیابی گردید. نانوذره اکسید آهن با پوشش آلژینات در غلظت های 0/256 تا 90 میکروگرم در میلی لیتر توانست تشکیل بیوفیلم را در سویه های بالینی سودوموناس مهار کند. مطالعه حاضر روشن نمود، می توان از نانوذرات اکسید آهن اصلاح شده با آلژینات به عنوان یک عامل ضدباکتریایی جهت مهار تشکیل بیوفیلم سودوموناس آئروژینوزا استفاده نمود.
http://www.aejournal.ir/article_121695_19767bbb6e8e1f35730773797b5b934d.pdf
2020-09-22
501
510
10.22034/aej.2020.121695
سودوموناس آئروژینوزا
بیوفیلم
نانوذرات
مقاومت آنتی بیوتیکی
آلاله
جابری جهرمی
alalehjaberi@yahoo.com
1
گروه ژنتیک و بیوتکنولوژی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
شهره
زارع کاریزی
shohrehzare@yahoo.com
2
گروه ژنتیک و بیوتکنولوژی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
LEAD_AUTHOR
راحله
صفایی جوان
safaeijavan@gmail.com
3
گروه بیوشیمی بیوفیزیک، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
زمانی مزده، پ.؛ زارع کاریزی، ش. و صفایی جوان، ر. 1398. اثر مهارکنندگی نانوذرات اکسیدآهن با پوشش کیتوسان بر جدایههای بالینی باکتری سودوموناس آئروژینوزا و ارتباط آن با قدرت بیوفیلم باکتری. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 11، شماره 1، صفحات 323 تا 330.
1
رفویی، ع.؛ زارع کاریزی، ش. و هنرمند، س. 1397. ارزیابی الگوی مقاومت آنتی بیوتیکی و پتانسیل تشکیل بیوفیلم در سویه های بالینی سودوموناس آئروژینوزا. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 10، شماره 3، صفحات 483 تا 488.
2
عباس والی، م.؛ ابراهیمی، ع. و شهریاری، ف.، 1396. بررسی اثر مهاری نانو ذره اکسید روی در تشکیل بیوفیلمِ برخی باکتری های بیماری زای غذازاد. مجله میکروب شناسی پزشکی ایران. دوره 11، شماره 5، صفحات 115 تا 124.
3
Akbari, K.R. and Ali, A.A., 2017. Study of antimicrobial effects of several antibiotics and iron oxide nanoparticles on biofilm producing pseudomonas aeruginosa. Nanomedicine Journal. Vol. 4, pp: 37-43.
4
Alshehri, A.M.; Wilson Jr, O.C.; Dahal, B.; Philip, J.; Luo, X. and Raub, C.B., 2017. Magnetic nanoparticle loaded alginate beads for local micro-actuation of in vitro tissue constructs. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. Vol. 159, pp: 945-955.
5
Ansari, S.A.; Oves, M.; Satar, R.; Khan, A.; Ahmad, S. I.; Jafri, M.A.; Zaidi, S.K. and Alqahtani, M.H., 2017. Antibacterial activity of iron oxide nanoparticles synthesized by co precipitation technology against Bacillus cereus and Klebsiella pneumoniae. Polish Journal of Chemical Technology. Vol. 19, pp: 110-115.
6
Applerot, G.; Lellouche, J.; Lipovsky, A.; Nitzan, Y.; Lubart, R.; Gedanken, A. and Banin, E., 2012. Understanding the antibacterial mechanism of CuO nanoparticles: revealing the route of induced oxidative stress. Small. Vol. 8, pp: 3326-3337.
7
Arakha, M.; Pal, S.; Samantarrai, D.; Panigrahi, T.K.; Mallick, B.C.; Pramanik, K. and Jha, S., 2015. Antimicrobial activity of iron oxide nanoparticle upon modulation of nanoparticle bacteria interface. Scientific Reports. Vol. 5, pp: 1-12.
8
Arias, L.; Pessan, J.; Vieira, A.; Lima, T.; Delbem, A. and Monteiro, D., 2018. Iron Oxide Nanoparticles for Biomedical Applications: A Perspective on Synthesis, Drugs, Antimicrobial Activity, and Toxicity. Antibiotics. Vol. 7, pp: 1-32.
9
Azam, A.; Ahmed, O.; Khan, H. and Memic, A., 2012. Antimicrobial activity of metal oxide nanoparticles against Gram-positive and Gram-negative bacteria: a comparative study. International Journal of Nanomedicine. Vol. 7, pp: 6003-6009.
10
Behera, S.S.; Patra, J.K.; Pramanik, K.; Panda, N. and Thatoi, H., 2012. Characterization and evaluation of antibacterial activities of chemically synthesized iron oxide nanoparticles. World Journal of Nano Science and Engineering. Vol. 2, pp:196-200.
11
Berry, C.C.; Wells, S.; Charles, S. and Curtis, A.S., 2003. Dextran and albumin derivatised iron oxide nanoparticles: influence on fibroblasts in vitro. Biomaterials. Vol. 24, pp: 4551-4557.
12
Bruce, I.J. and Sen, T., 2005. Surface modification of magnetic nanoparticles with alkoxysilanes and their application in magnetic bioseparations. Langmuir. Vol. 21, pp: 7029-7035.
13
Bucak, S.; Yavuztürk, B. and Sezer, A.D., 2012. Magnetic nanoparticles: synthesis, surface modifications and application in drug delivery. Recent Advances in Novel Drug Carrier Systems. Vol. 2, pp: 165-200.
14
Caamano, M.A. and Carrillo, M.M., 2016. Iron Oxide Nanoparticle Improve the Antibacterial Activity of Erythromycin. Journal of Bacteriology and Parasitology. Vol. 7, pp: 1-4.
15
Chatterjee, J.; Haik, Y. and Chen, C.J., 2001. Modification and characterization of polystyrene-based magnetic microspheres and comparison with albumin-based magnetic microspheres. Journal of Magnetism and Magnetic Materials. Vol. 225, pp: 21-29.
16
El-Shamy, O.A.; El-Azabawy, R.E. and El-Azabawy, O., 2019. Synthesis and Characterization of Magnetite Alginate Nanoparticles for Enhancement of Nickel and Cobalt Ion Adsorption from Wastewater. Journal of Nanomaterials. Vol. 6326012, pp: 1-8.
17
Frieri, M.; Kumar, K. and Boutin, A., 2017. Antibiotic resistance. Journal of Infection and Public Health. Vol. 10, pp: 369-378.
18
Gokulakrishnan, R.; Ravikumar, S. and Raj, J.A., 2012. In vitro antibacterial potential of metal oxide nanoparticles against antibiotic resistant bacterial pathogens. Asian Pacific Journal of Tropical Disease. Vol. 2, pp: 411-413.
19
Gupta, A.K. and Gupta, M., 2005. Synthesis and surface engineering of iron oxide nanoparticles for biomedical applications. Biomaterials. Vol. 26, pp: 3995-4021.
20
Gupta, A.K. and Wells, S., 2004. Surface-modified superparamagnetic nanoparticles for drug delivery: preparation, characterization, and cytotoxicity studies. IEEE Transactions on Nanobioscience. Vol. 3, pp: 66-73.
21
He, S.; Feng, Y.; Gu, N.; Zhang, Y. and Lin, X., 2011. The effect of γ-Fe2O3 nanoparticles on Escherichia coli genome. Environmental Pollution. Vol. 159, pp: 3468-3473.
22
Huang, K.S.; Shieh, D.B.; Yeh, C.S.; Wu, P.C. and Cheng, F.Y., 2014. Antimicrobial applications of water-dispersible magnetic nanoparticles in biomedicine. Current Medicinal Chemistry. Vol. 21, pp: 3312-3322.
23
Jung, W.K.; Koo, H.C.; Kim, K.W.; Shin, S.; Kim, S.H. and Park, Y.H., 2008. Antibacterial activity and mechanism of action of the silver ion in Staphylococcus aureus and Escherichia coli. Applied and Environmental Microbiology. Vol. 74, pp: 2171-2178.
24
Kango, S.; Kalia, S.; Celli, A.; Njuguna, J.; Habibi, Y. and Kumar, R., 2013. Surface modification of inorganic nanoparticles for development of organic–inorganic nanocomposites-A review. Progress in Polymer Science. Vol. 38, pp: 1232-1261.
25
Liong, M.; France, B.; Bradley, K.A. and Zink, J.I., 2009. Antimicrobial activity of silver nanocrystals encapsulated in mesoporous silica nanoparticles. Advanced Materials. Vol. 21, pp:1684-1689.
26
Masadeh, M.M.; Karasneh, G.A.; Al-Akhras, M.A.; Albiss, B.A.; Aljarah, K.M.; Al-azzam, S.I. and Alzoubi, K.H., 2015. Cerium oxide and iron oxide nanoparticles abolish the antibacterial activity of ciprofloxacin against gram positive and gram negative biofilm bacteria. Cytotechnology. Vol. 67, pp: 427-435.
27
Mathur, T.; Singhal, S.; Khan, S.; Upadhyay, D.; Fatma, T. and Rattan, A., 2006. Detection of biofilm formation among the clinical isolates of staphylococci: an evaluation of three different screening methods. Indian Journal of Medical Microbiology. Vol. 24, pp: 25-29.
28
Mazdeh, P.Z.; Karizi, S.Z. and Javan, R.S., 2019. The inhibitory effect of Chitosan Coated Iron oxide nanoparticlses on Pseudomonas Aeruginosa clinical isolates and its relevance with bacterial biofilm. Journal of Animal Environment. Vol. 11, pp: 323-330.
29
McCartney, J.; Collee, J. and Mackie, T., 1989. Practical medical microbiology. Charchill Livingstone. London, UK. 601 p.
30
Morovati, A.; Panahi, H.A. and Yazdani, F., 2016. Grafting of allylimidazole and n-vinylcaprolactam as a thermosensitive polymer onto magnetic nano-particles for the extraction and determination of celecoxib in biological samples. International Pournal of Pharmaceutics. Vol. 513, pp: 62-67.
31
Nikolić, M.; Vasić, S.; Đurđević, J.; Stefanović, O. and Čomić, L., 2014. Antibacterial and anti-biofilm activity of ginger (Zingiber officinale) ethanolic extract. Kragujevac Journal of Science. Vol.36, pp: 129-136.
32
Nosrati, H.; Salehiabar, M.; Davaran, S.; Ramazani, A.; Manjili, H.K. and Danafar, H., 2017. New advances strategies for surface functionalization of iron oxide magnetic nano particles (IONPs). Research on Chemical Intermediates. Vol. 43, pp: 7423-7442.
33
Prodan, A.M.; Iconaru, S.L.; Chifiriuc, C.M.; Bleotu, C.; Ciobanu, C.S.; Motelica, M.; Sizaret, S. and Predoi, D., 2013. Magnetic Properties and Biological Activity Evaluation of Iron Oxide Nanoparticles. Journal of Nanomaterials. Vol. 2013, pp: 1-8.
34
Ramalingam, B.; Parandhaman, T. and Das, S.K., 2016. Antibacterial effects of biosynthesized silver nanoparticles on surface ultrastructure and nanomechanical properties of gram-negative bacteria viz. Escherichia coli and Pseudomonas aeruginosa. ACS Applied Materials and Interfaces. Vol. 8, pp: 4963-4976.
35
Rasamiravaka, T.; Labtani, Q.; Duez, P. and El Jaziri, M., 2015. The formation of biofilms by Pseudomonas aeruginosa: a review of the natural and synthetic compounds interfering with control mechanisms. BioMed Research International. Vol. 759348, pp: 1-18.
36
Sharma, D.; Misba, L. and Khan, A.U., 2019. Antibiotics versus biofilm: an emerging battleground in microbial communities. Antimicrobial Resistance and Infection Control. Vol. 8, pp: 1-10.
37
Singh, N.; Jenkins, G.; Asadi, R. and Doak, S.H., 2010. Potential toxicity of superparamagnetic iron oxide nanoparticles (SPION). Nano reviews. Vol. 5358, pp: 1-15.
38
Taylor, P.K.; Yeung, A.T. and Hancock, R.E., 2014. Antibiotic resistance in Pseudomonas aeruginosa biofilms: towards the development of novel anti-biofilm therapies. Journal of Biotechnology. Vol. 191, pp:121-130.
39
Tran, N.; Mir, A.; Mallik, D.; Sinha, A.; Nayar, S. and Webster, T.J., 2010. Bactericidal effect of iron oxide nanoparticles on Staphylococcus aureus. International Journal of Nanomedicine. Vol. 5, pp: 277-283.
40
Wang, L.; Hu, C. and Shao, L., 2017. The antimicrobial activity of nanoparticles: present situation and prospects for the future. International Journal of Nanomedicine. Vol. 12, pp: 1227-1249.
41
Wu, W.; Jiang, C.Z. and Roy, V.A., 2016. Designed synthesis and surface engineering strategies of magnetic iron oxide nanoparticles for biomedical applications. Nanoscale. Vol. 8, pp: 19421-19474.
42