ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی زیستگاه کفتار راه راه (Hyaena hyaena) با استفاده از روش تجمیع در دامنه کوه شاهو استان کرمانشاه
کفتار راه راه (Hyaena hyaena) در مقیاس جهانی گونه ای در معرض خطر است و در محدوده جمعیت خود با خطر انقراض های محلی رو به رو است از این رو بررسی و ارزیابی زیستگاه آن برای مناطق تحت پوشش امری ضروری به نظر می رسد. این مطالعه به منظور بررسی وضعیت توزیع این گونه در دامنه کوه شاهو واقع در استان کرمانشاه انجام گرفته است. در این مطالعه پس از جمع آوری نقاط حضور گونه، متغیرهای زیستگاهی شامل جهت شیب، ارتفاع، فاصله از مراتع، فاصله از زمین های کشاورزی، فاصله از جاده اصلی، تراکم مناطق مسکونی، اکوتون، درصد شیب و میدان دید شناسایی و در تحلیل وارد شدند. در این راستا ابتدا با استفاده از مدل های تنها حضور ماشین بردار پشتیبان تک کلاسه زیستگاه گونه مدل سازی گردید. با تایید اعتبار خروجی مدل به وسیله معیار AUC از خروجی باینری مدل برای تهیه نقاط شبه عدم حضور به تعداد 10 برابر نقاط حضور با فاصله تقریبی 5 کیلومتر استفاده شد. سپس از مدل های آنتروپی بیشینه (MaxEnt)، مدل شبکه عصبی با پسخور (BP-ANN) و ماشین بردار پشتیبان دو کلاسه (SVM) برای مدل سازی استفاده شد که اعتبار هرکدام به ترتیب 0/97، 0/97 و 89/0 محاسبه گردید. سپس تمام مدل ها با توجه به وزن دریافتی از اعتبار سنجی مدل (AUC) در یک سناریو تجمیع استفاده شدند. حساسیت سنجی مدل با استفاده از روش جنگل تصادفی انجام گرفت. نتایج نشان داد که متغیرهای میدان دید، فاصله از جاده و فاصله از مراتع مهم ترین متغیرهای زیستگاهی موثر روی زیستگاه کفتار راه راه در منطقه هستند.
http://www.aejournal.ir/article_131945_9cd08b28049980b60607c14cc9a22318.pdf
2021-04-21
1
10
10.22034/aej.2021.131945
کفتار راه راه
پراکنش
روش تجمیع
شاهو
کرمانشاه
محمد حسین
فلاحتی
mohammadfalahati534@gmail.com
1
اداره کل حفاظت محیط زیست شهرستان کرمانشاه، کرمانشاه، ایران
AUTHOR
سامان
فلاحتی
samanfalahati1992@gmail.com
2
گروه محیطزیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
LEAD_AUTHOR
پیمان
کرمی
peymankarami1988@gmail.com
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، ا.؛ احمدزاده، ف. و نعیمی، ب.، 1396. پیش بینی پتانسیل توزیع گونه ای کفتار راه راه (Hyaena hyaena) در پاسخ به تغییرات اقلیمی در ایران. فصلنامه علوم محیطی. دوره 15، شماره 4، صفحات 215 تا 232.
1
ایلدرمی, ع.؛ میرسنجری، م.؛ براتی، ا. و علیزاده شعبانی، ا.، ۱۳۹۰. بررسی مقدماتی پراکندگی کفتار راه راه در منطقه حفاظت شده لشگردر استان همدان. همایش ملی علوم محیط زیست و توسعه پایدار. دانشگاه ملایر.
2
ایمانی بوژانی، ف.؛ نادری، م.؛ ایمانی هرسینی، ج. و شمس اسفندآباد، ب.، 1397. مدل سازی توزیع کل و بز وحشی (1777Capra aegagrus Erxleben) در منطقه حفاظت شده و پناهگاه حیات وحش بیستون کرمانشاه با مدل های مبتنی بر داده های حضور. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 10، شماره 3، صفحات 17 تا 28.
3
جهانی، ع.، 1395. مدل سازی آشفتگی انبوهی جنگل در ارزیابی محیطی با استفاده از شبکه عصبی مصنوعی. فصلنامه تحقیقات جنگل و صنوبر ایران. جلد 24، شماره 2، صفحات310 تا 322.
4
خاکی صحنه، س.؛ علیزاده شعبانی، ا.؛ کابلی، م.، نوری، ز. و یاری، ع.، 1395. مدل سازی نیازمندی های زیستگاهی کفتار راه راه (Hyaena hyaena) در منطقه حفاظت شده لشگردر استان همدان. فصلنامه پژوهش های محیط زیست. دوره 7، شماره 13، صفحات 11 تا 20.
5
رضائی، س.؛ نادری، س. و کرمی، پ.، 1397. بررسی وضعیت بوم شناختی نواحی لانه گزینی کفتار راه راه ایرانی (Hyaena hyaena) در منطقه حفاظت شده هفتاد قله اراک با استفاده از روش آنتروپی بیشینه. فصلنامه محیط زیست طبیعی. دوره 70، شماره 2، صفحات 352 تا 362.
6
سعیدی، س. و ماهینی، ع.، 1393. مدل سازی ارزش های زیبایی شناختی سرزمین با استفاده از شبکه عصبی مصنوعی (مطالعه موردی حوضه آبخیز زیارت، گرگان، گلستان.). ویژه نامه پژوهش های محیط زیست. شماره 1، دوره 1، صفحات 3 تا 10.
7
شبانی، ا.؛ حبیب زاده، ن. و حسینی قمی، م.، 1396. تعیین اولویت کریدورهای حیات وحش بین مناطق حفاظت شده استان آذربایجان شرقی. فصلنامه جغرافیا و پایداری محیط. سال7، شماره 22، صفحات 67 تا 82.
8
ضیایی، ه.،1390. راهنمای صحرایی پستانداران ایران. چاپ دوم. کانون آشنایی با حیات وحش تهران. 405 صفحه.
9
علوی، ج.؛ نوری، ز. و زاهدی امیری، ق.، 1395. تعیین موثرترین عوامل محیطی بر توان رویشگاه راش شرقی با استفاده از تکنیک جنگل تصادفی در جنگل خیرود نوشهر. فصلنامه جنگل ایران. سال 8، شماره 4، صفحات 477 تا 492.
10
کرمی، م.؛ ریاضی، ب. و کلانی، ن.، 1385. ارزیابی زیستگاه کفتار راه راه ایرانی (Hyaena hyaena hyaena) در پارک ملی خجیر و ارایه مدل مطلوبیت به کمک روشHEP . علوم محیطی. دوره 3، شماره 11، صفحات 77 تا 86.
11
کرمی، م.؛ کلانی، ن. و ریاضی، ب.، 1387. بررسی پراکنش فصلی کفتار راه راه ایرانی (Hyaena hyaena hyaena) پارک ملی خجیر. علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 10، شماره 2، صفحات 99 تا 104.
12
کرمی، پ.؛ شایسته، ک.؛ کرمی، ا. و حسینی، س.م.، 1397. شناسایی دالان های زیستگاهی گوسفند وحشی ارمنی در بستر سیمای سرزمین مبتنی بر تئوری مدار الکتریکی (مطالعه موردی: مناطق لشگردر و گلپرآباد). فصلنامه پژوهش های جانوری. جلد 31، شماره 3، صفحات 295 تا 306.
13
کفاش، ا.؛ کابلی، م. و کهلر، گ.، 1394. بررسی مقایسه ای اثر تغییر اقلیم بر خزندگان مناطق بیابانی و کوهستانی ایران؛ مطالعه موردی (سوسمار دم تیغی بین النهرین Saara loricataو آگامای قفقازی Paralaudakia caucasia). فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 7، شماره 3، صفحات 103 تا 108.
14
معاونت استانداری کرمانشاه. 1395. واحد GIS، نقشه کاربری/ پوشش اراضی استان کرمانشاه.
15
Adhikari, D.; Gurung, A.; Sigdel, P.; Poudel, S.; Regmi, P.R. and Basnet, S., 2018. Striped Hyaena: The recent record of road kill of Hyaena hyaena in Central Terai of Nepal. Zoo's Print. Vol. 33,No. 10, pp: 23-26.
16
Akay, A.E.; Inac, S. and Yildirim, I.C., 2011. Monitoring the local distribution of stripe hyenas (Hyaena hyaena) in the Eastern Mediterranean Region of Turkey (Hatay) by using GIS and remote sensing technologies. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 181, pp: 445-455.
17
Alam, M.S.; Khan, J.A.; Kushwaha, S.P.; Agrawal, R.; Pathak, B.J. and Kumar, S., 2014. Assessment of suitable habitat of near threatened striped hyena (Hyaena hyaena Linnaeus, 1758) using Remote Sensing and Geographic Information System. Asian Journal of Geoinformatics. Vol. 14,No. 2.
18
Alam, M.S.; Khan, J.A. and Pathak, B.J., 2015. Striped hyena (Hyaena hyaena) status and factors affecting its distribution in the Gir National Park and Sanctuary, India. Folia Zoologica. Vol. 64,No. 1, pp: 445-455.
19
Atay, E.; Kasapoğlu, A. and Çetin, İ.T., 2017. Status of Striped Hyaena (Hyaena hyaena) in Hatay and Şanlıurfa Turkey.
20
Birks, H.J.B., 2012. Overview of numerical methods in palaeolimnology. In: Tracking environmental change using lake sediments, Springer Netherlands. pp: 19-92.
21
Chefaoui, R.M. and Lobo, J.M., 2008. Assessing the Effects of Pseudo-Absences on Predictive Distribution Model Performance. Ecol Modell. Vol. 210,No. 4, pp: 478-486.
22
Chen, Y.; Shen, L.; Li, R.; Xu, X.; Hong, H.; Lin, H. and Chen, J., 2020. Quantification of interfacial energies associated with membrane fouling in a membrane bioreactor by using BP and GRNN artificial neural networks. Journal of Colloid and Interface Science.
23
Cristianini, N. and Scholkopf, B., 2002. Support vector machines and kernel methods the new generation of learning machines. Ai Mag. Vol. 23, pp: 31-41.
24
Elith, J.H.; Graham, C.P.; Anderson, R.; Dudík, M.; Ferrier, S.; Guisan, A. and Li, J., 2006. Novel methods improve prediction of species’ distributions from occurrence data. Ecography. Vol. 29,No. 2, pp: 129-151.
25
Falcucci, A.; Maiorano, L. and Boitani, L., 2007.Changes in land-use/land-cover patterns in Italy and their implications for biodiversity conservation. Landscape ecology. Vol. 22,No. 4, pp: 617-631.
26
Garcia, K.; Lasco, R.; Ines, A.; Lyon, B. and Pulhin, F., 2013. Predicting geographic distribution and habitat suitability due to climate change of selected threatened forest tree species in the Philippines. Applied Geography. Vol. 44, pp: 12-22.
27
Ghritlahre, H.K. and Prasad, R.K., 2018. Application of ANN technique to predict the performance of solar collector systems-A review. Renewable and Sustainable Energy Reviews. Vol. 84,pp: 75-88.
28
Guo, Q.; Kelly, M. and Graham, C.H., 2005. Support vector machines for predicting distribution of Sudden Oak Death in California. Ecological modelling. Vol. 182,No. 1, pp: 75-90.
29
Hoffman, J.D.; Narumalani, S.; Mishra, D.R; Merani, P. and Wilson, R.G., 2008. Predicting potential occurrence and spread of invasive plant species along the North Platte River, Nebraska. Invasive Plant Science and Management. Vol. 1,No. 4, pp: 359-367.
30
Graham, C.H.; Elith, J.; Hijmans, R.J.; Guisan, A.; Townsend Peterson, A.; Loiselle, B.A. and NCEAS Predicting Species Distributions Working Group. 2008. The influence of spatial errors in species occurrence data used in distribution models. Journal of Applied Ecology. Vol. 45,No. 1, pp: 239-247.
31
Jahani, A.; Goshtasb, H. and Saffariha, M., 2020. Tourism impact assessment modeling in vegetation density of protected areas using data mining techniques. Land Degradation & Development.
32
Janitza, S.; Strobl, C. and Boulesteix, A.L., 2013. An AUC-based permutation variable importance measure for random forests. BMC bioinformatics. Vol. 14,No. 1, pp: 119.
33
Kalantary, S.; Jahani, A.; Pourbabaki, R. and Beigzadeh, Z., 2019. Application of ANN modeling techniques in the prediction of the diameter of PCL/gelatin nanofibers in environmental and medical studies. RSC advances. Vol. 9,No. 43, pp: 24858-24874.
34
Kogo, B.K.; Kumar, L.; Koech, R. and Kariyawasam, C.S., 2019. Modelling climate suitability for rainfed Maize cultivation in Kenya using a Maximum Entropy (MaxENT) approach. Agronomy. Vol. 9,No. 11, pp: 727.
35
Leakey, L.N.; Milledge, S.A.H.; Leakey, S.M.; Edung, J.; Haynes, P.; Kiptoo, D.K. and McGeorge, A., 1999. Diet of striped hyaena in northern Kenya. African Journal of Ecology. Vol. 37,pp: 314-326.
36
Lukarevsky, V.S., 2001. The leopard, striped hyaena and wolf in Turkmenistan. Signar, Moscow.
37
Maurya, V.; Singh, J.P.; Naseem, K.; Mehra, S.; Dhakate, P.M.; Verma, N. and Ansari, A.G., 2018. Photographic evidence of Striped Hyena Hyaena hyaena (Mammalia: Carnivora: Hyaenidae) in Ramnagar forest division, Uttarakhand, India. Journal of Threatened Taxa. Vol. 10,No. 15, pp: 13017-13019.
38
Mills, M.G.L. and Hofer, H., 1998. Hyaenas: Status Survey and Action Plan. IUCN/SSC Hyaena Specialist Group. IUCN, Gland andCambridge. pp: 39-79.
39
Morrison, M.; Marcot, L. and Mannan, R., .2012. Wildlife-habitat relationships Concepts and applications. University of Wisconsin Press Ltd. Madison. Wisconsin, USA. 130 p.
40
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of specie geographic distributions. Ecological Modelling. Vol. 190, pp: 231-259.
41
Qarqaz, M.A.; Abu Baker, M.A. and Amr, Z.S., 2004. Status and ecology of the Stripe Hyaena, Hyaena hyaena, in Jordan. Zoology in the Middle East. Vol. 33,No. 1, pp: 87-92.
42
Rosenberg, B.; Reichman, A. and Shamoon, H., 2016. Striped hyena (Hayena hyaena) movement patterns near Haifa city, Mt. Carmel, Israel [In Hebrew]. Jerusalem: Israel’s Nature and Parks Authority.
43
Schölkopf, B.; Platt, J.C.; Shawe-Taylor, J.; Smola, A.J. and Williamson, R.C., 2001. Estimating the support of a high-dimensional distribution. Neural computation. Vol. 13,No. 7, pp: 1443-1471.
44
Senay, S.D.; Worner, S.P. and Ikeda, T., 2013. Novel three-step pseudo-absence selection technique for improved species distribution modelling. PLoS One. Vol. 8,No. 8.
45
Shamoon, H. and Shapira, I., 2019. Limiting factors of Striped Hyaena, Hyaena hyaena, distribution and densities across climatic and geographical gradients (Mammalia: Carnivora). Zoology in the Middle East. pp: 1-12.
46
Singh, P.;Gopalaswamy, A.M. and Karanth, K.U., 2010. Factors influencing densities of striped hyenas (Hyaena hyaena) in arid regions of India. Journal of Mammalogy. Vol. 91,No. 5, pp: 1152-1159.
47
Tourani, M.; Moqanaki, E.M. and Kiabi, B.H., 2012. Vulnerability of Striped Hyaenas, Hyaena hyaena, in a human-dominated landscape of Central Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 56,No. 1, pp: 133-136.
48
Vapnik, V., 1995. The Nature of Statistical Learning Theory. Springer-Verlag, New York.
49
Wagner, A.P., 2006. Behavioral ecology of the striped hyena (Hyaena hyaena) (Doctoral dissertation, Montana State University-Bozeman, College of Letters & Science).
50
Zhao, Z.; Lou, Y.; Chen, Y.; Lin, H.; Li, R. and Yu, G., 2019. Prediction of interfacial interactions related with membrane fouling in a membrane bioreactor based on radial basis function artificial neural network (ANN). Bioresource technology. Vol. 282, pp: 262-268.
51
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی نگرش جوامع محلی نسبت به حضور خرس قهوه ای (Ursus arctos) در استان مازندران
بررسی نگرش جوامع محلی نسبت به گوشت خواران در زیستگاهی که این گونه ها با انسان در تقابل هستند، برای مدیریت و حفاظت از این گونه ها ضروری است. در مطالعه حاضر به منظور شناخت نگرش جوامع محلی نسبت به حضور خرس قهوه ای در استان مازندران پرسشنامه ای طراحی و 230 نفر از مردم محلی مصاحبه صورت گرفت. در این مطالعه متغیرهای سن، تحصیلات، تجربه حمله خرس به انسان، تجربه حمله خرس به سرمایه های انسانی، ترس از خرس، دانش مردم محلی از نقش خرس و باورهای سنتی مردم محلی به عنوان متغیر مستقل و نیز پذیرش (1) و یا عدم پذیرش (0) توسط مردم محلی در زیستگاه هایی که همزیستی دارند به عنوان متغیر وابسته در نظر گرفته شد. در نهایت با استفاده از روش آماری رگرسیون منطقی دوتایی نگرش جوامع محلی در خصوص پذیرش یا عدم پذیرش این گونه مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت. نتایج نشان داد در بین متغیرهای بررسی شده افرادی که دانش بالایی در خصوص این گونه دارند، افرادی که از این گونه می ترسند و افرادی که باور سنتی نسبت به این گونه دارند موافق حضور خرس در طبیعت هستند. نتایج نشان داد که دانش جوامع محلی در خصوص خرس بر نگرش مثبت و علاقمندی به حضور خرس موثر بوده هم چنین ترس از خرس سبب نگرش منفی و عدم علاقه به خرس نشده است. اما با توجه به افزایش تعارضات در سال های اخیر در استان مازندران ممکن است ضررهای اقتصادی سبب افزایش اقدامات تلافی جویانه توسط مردم محلی شود و بقای این گونه را با خطر رو به رو کند.
http://www.aejournal.ir/article_132597_33d6910ef6e99184107f4682b85ffe1a.pdf
2021-04-21
11
18
10.22034/aej.2021.132597
تعارض
استان مازندران
جوامع محلی
خرس قهوه ای
نگرش جوامع محلی
ماریا
مددی
maryamadadi@yahoo.com
1
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست کرج، کرج، ایران
AUTHOR
باقر
نظامی بلوچی
nezamibagher@gmail.com
2
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست کرج، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد
کابلی
mkaboli@ut.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
حمیدرضا
رضایی
rezaei@gau.ac.ir
4
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
علیرضا
محمدی
amohamadi@ut.ac.ir
5
گروه مهندسی محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه جیرفت، جیرفت، ایران
AUTHOR
حق وردی، ف.؛ جهانی، ع.؛ زبردست؛ ل.؛ مخدوم، م. و گشتاسب، ح.،1398. ارزیابی یکپارچگی زیستگاه های مرتعی حفاظت شده با استفاده از رهیافت اکولوژیکی سیمای سرزمین. مجله حفاظت زیست بوم گیاهان، دوره 7، شماره 14، صفحات 1 تا 20.
1
حکیم دوست، ی.؛ پورزیدی ، ع. و گرامی، م.، 1394. تحلیل مکانی بارش رگباری استان مازندران در محیط سامانه اطلاعات جغرافیایی (GIS). فصلنامه اطلاعات جغرافیایی. دوره 26، شماره 102، صفحات 191 تا 203.
2
کوچالی، ف.؛ نظامی، ب.؛ گشتاسب، ح. و رایگانی، ب.، 1397. شناسایی زیستگاه های کلیدی برای حفاظت از خرس قهوه ای (Ursus arctos) در دامنه شمالی البرز. مجله محیط زیست جانوری. سال 10، شماره 3، صفحات 1 تا 8.
3
نظامی، ب.، 1393. بررسی عادت غذایی فصلی خرس قهوه ای سوری (Ursus arctos syriacus linnaus) در منطقه حفاظت شده البرز مرکزی. مجله تاکسونومی و بیوسیستماتیک. سال 6، شماره 19، صفحات 27 تا 36.
4
نظامی، ب.؛ عطایی، ف.؛ حیدری، ح.ر.؛ نعیمایی، ن.؛ اسحاقی، ر. و علیزاده شعبانی، ا.، 1396. مناطق کلیدی جهت حفاظت از خرس قهوه ای (Ursus arctos Linnaeus, 1758) ماده در البرز مرکزی. زیست شناسی جانوری تجربی. شماره 4، صفحات 127 تا 141.
5
نوحه گر، ا.؛ جباریان امیری، ب. و افروخته، ر.، 1394. تحلیل کاربری سرزمین در بخش مرکزی گیلان با رویکرد اکولوژی سیمای سرزمین. فصلنامه جغرافیا و آمایش شهری منطقهای. دوره 5، شماره 15، صفحات 197 تا 214.
6
محمدی، ا.ر.؛ کابلی، م.؛ علم بیگی، ا. و ویسنت لوپز بااو، ج.، 1397. تحلیل شبکه اجتماعی در راستای مدیریت تعارض انسان و محیط زیست بر مبنای شواهدی از حملات گرگ در جوامع محلی استان همدان. مجله تحقیقات اقتصاد و توسعه کشاورزی ایران. دوره 47، شماره 3، صفحات 461 تا 472.
7
Ambarli, H. and Bilgin, C.C., 2008. Human–brown bear conflicts in Artvin, northeastern Turkey: Encounters, damage, and attitudes. Ursus. Vol. 19, No. 2, pp: 146-153.
8
Anderson, Z. and Ozolin¸ S.,2004. Public perception of large carnivores in Latvia. Ursus. Vol. 15, pp: 181-187.
9
Arce, S.S., 2009. Percepcion de las causas de desaparicion del lince iberico e intereses sobre la especie [Perception of the causes of disappearance of the Iberian lynx and interests on the species]. Medio ambiente y comportamiento humano. Vol. 10, pp: 63-75.
10
Aryal, A.; Sathyakumar, S. and Schwartz, C.C., 2010. Current status of brown bears in the Manasalu Conservation Area, Nepal. Ursus. Vol. 21, pp: 109-114.
11
Barbosa, J.A.A. and Barbosa, R.K.V.C., 2011. Percepcao de moradores do semi-arido paraibano sobre a diversidade e relevancia da fauna em duas comunidades rurais [Perception of residents of the semi-arid region of Paraiba on the diversity and relevance of fauna in two rural communities]. Revista de Biologia e Ciências da Terra. Vol. 11, pp: 123-133.
12
Bath, A.J., 1994. Public attitudes toward polar bears: an application of human dimensions in wildlife resource research. In: Proceedings of the International Union of Game Biologists XXI Congress, Halifax, Canada. Vol. 1, pp: 168-174.
13
Beedell, J.D.C. and Rehman, T., 1999. Explaining farmers’ conservation behaviour: Why do farmers behave the way they do? Journal of Environmental Management. Vol.57, pp: 165-176.
14
Berry, M.; Nickerson, N. and Metcalf, E., 2016. Using spatial, economic, and ecological opinion data to inform gray wolf conservation. Wildlife Society Bulletin. Vol. 40, No. 3, pp: 554-563.
15
Bertassoni, A., 2012. Perception and popular reports about giant anteaters (Myrmecophaga Tridactyla Linnaeus, 1758) by two Brazilian traditional communities. Edentata. Vol. 13, pp:10-17.
16
Bjerke, T.; Reitan, O. and Kellert, S.R., 1998. Attitudes toward wolves in southeastern Norway. Society and Natural Resources. Vol. 11, pp: 169-178.
17
Bright, A.D. and Manfredo, M.J., 1996. A conceptual model of attitudes toward natural resource issues: A case study of wolf reintroduction. Human Dimensions of Wildlife. Vol. 1, pp: 1-21.
18
Bruskotter, J.T. and Wilson, R.S., 2013. Determining where the wild things will be: using psychological theory to find tolerance for large carnivores. Conserv. Lett. No. 7, pp: 158-165.
19
Can, O.M.; D’Cruze, N.; Garshelis, D.L.; Beecham, J. and MacDonald, D.W., 2014. Resolving human-bear conflict: a global survey of countries, experts, and key factors. Conserv. Lett. Vol. 7, pp: 501-513.
20
Daniel, W.W., 1999. Biostatistics: A foundation for analysis in the health sciences. 7th edn. New York: University of Nevada, Las Vegas.
21
Ding, A.W., 1998. Famous and precious Chinese traditional medicine pedigree. Nanjing, China: Jiangsu Science and Technology Press.
22
Dressel, S.; Sandström, C.; Ericsson, G., 2015. A meta analysis of studies on attitudes toward bears and wolves across Europe 1976-2012. Conserv. Biol. Vol. 29, pp: 565-574.
23
Dutton, A.J.; Hepburn, C. and Macdonald, D.W., 2011. A stated preference investigation the Chinese demand for farmed vs. wild bear bile. PLoS ONE. Vol. 6, pp: e21243.
24
Eklund, A.; López-Bao, J.V.; Tourani, M.; Chapron, G. and Frank, J., 2017. Limited evidence on the effectiveness of interventions to reduce livestock predation by large carnivores. Sci. Rep. Vol. 7, pp: 2097.
25
Glikman, J.A.; Vaske, J.J.; Bath, A.J.; Ciucci, P. and Boitani, L., 2012. Residents' support for wolf and bear conservation: the moderating influence of knowledge. Eur. J. Wildl. Res. Vol. 58, pp: 295-302.
26
Johansson, M. and Frank, J., 2016. The impact of access to an ultrasonic scaring device on human fear of wolves. Wildl. Biol. Vol. 22, pp: 29-36.
27
Karamanlidis, A.A.; Sanopoulos, A.; Georgiadis, L. and Zedrosser, A., 2011. Structural and economic aspects of human-bear conflicts in Greece. Ursus. Vol. 22, No. 2, pp: 141-152.
28
Kellert, S., 1989. Perceptions of animals in America. In: Hoage, R.J. (Ed.), Perceptions of Animals in American Culture. Smithsonian Institute Press, Washington, DC. pp: 845-855.
29
Knight, A.J., 2008. ‘Bats, snakes and spiders, Oh me! How aesthetic and negativistic attitudes, and other concepts predict support for species protection. J. Environ. Psychol. Vol. 28, pp: 94-103.
30
Linnell, J.D.C.; Smith, M.E.; Odden, J.; Swenson, J.E. and Kaczensky. P., 1996. Carnivores and sheep farming in Norway. 4. Strategies for the reduction of carnivore livestock conflicts: A review. NINA Oppdragsmelding. Vol. 443, pp: 1-116.
31
Liordos, V.; Kontsiotis, V.; Anastasiadou, M. and Karavasias, E., 2017. Effects of attitudes and demography on public support for endangered species conservation. Science of the Total Environment. Vol. 595, pp: 25-34.
32
Marashi M., Turk Qashqaei, A.; Marashi, M. and Nejat, F., 2017. Seasonal human-brown bear conflicts in northern Iran: implications for conservation Zoology and Ecology. Vol. 27, No. 2, pp: 100-102.
33
McGariga, K. and Marks, B., 1995. FRAGSTATS: Spatial pattern analysis program for quantifying landscape structure. Forest Science Department Oregon State University, Corvallis.
34
Morzillo, A.T.; Mertig, A.G.; Garner, N. and Liu, J., 2007. Spatial distribution of attitudes toward proposed management strategies for wildlife recovery. Human Dimensions of Wildlife. Vol. 12, pp: 15-29.
35
Nyhus, P.J., 2016. Human-wildlife conflict and coexistence. Annual Review of Environment and Resources. Vol. 41, pp: 143-171.
36
Padmanabhan, P. and Sujana, KA., 2008. Animal products in traditional medicine from attappady hills of Western Ghats. Indian Journal of Traditional Knowledge. Vol. 7, No. 2, pp: 326- 329.
37
Parchizadeh, J., 2017. The brown bear Ursus arctospopulation in Lar Wildlife Refuge, northern Iran. Mammalia. pp: 1-5.
38
Rigg, R.; Finďo, S.; Wechselberger, M.; Gorman, M.L.; Sillero-Zubiri, C. and Macdonald, D.W., 2011. Mitigating carnivore–livestock conflict in Europe: lessons from Slovakia. Oryx. Vol. 45, No. 2, pp: 272-280.
39
Ripple, W.J.; Estes, J.A.; Beschta, R.L.; Wilmers,C.C.; Ritchie, E.G.; Hebblewhite, M. and Wirsing, A.J., 2014. Status and ecological effects of the world’s largest carnivores. Science. Vol. 343, No. 6167, Vol. 124-148.
40
Roskaft, E.; Bjerke, T.; Kaltenborn, B.; Linnell, J.D.C. and Andersen, R., 2003. Patterns of self-reported fear towards large carnivores among the Norwegian public. Evolution and Human Behavior. Vol. 24, pp: 184-198.
41
Roshkaft, E.; Handel, B.; Bjerke, T. and Kaltenborn, B.P., 2007. Human attitudes towards large carnivores in Norway. Wildl. Biol. Vol. 13, pp: 172-185.
42
Servheen, C., 1995. Bears. The Trade in Bears and Bear Parts. Chapter 4, Published by: IUCN, Gland, Switzerland, and Cambridge, UK. pp: 33-38.
43
Smith, J.B.; Nielsen, C.K.; Hellgren, E.C., 2014. Illinois resident attitudes toward recolonizing large carnivores. J. Wildl. Manag. Vol. 78, pp: 930-943.
44
Schwartz, C.C.; Miller, S.D. and Haroldson, M.A., 2003. Grizzy/brown bear. In: (G. A. Feldhamer, B. C. Thompson, and J. A. Chapman, eds.) Wild mammals of North America: Biology, management, and conservation. Johns Hopkins University Press, Baltimore, Maryland, USA. pp: 556-586.
45
Statistical Center of Iran/https://www.amar.org.ir
46
Turk Qashqaei, A.; Karami, M. and Etemad, V., 2014. Wildlife conflicts between humans and Brown Bears, Ursus arctos, in the Central Zagros, Iran. Zoology in the Middle East.Vol. 60, No. 2, pp:107-110.
47
Arbieua, U.; Mehring, M.; Bunnefeld, N.; Kaczensky, P.; Reinhardtf, I.; Ansorge, H.; Böhning-Gaese, K.; Glikmanj, J.; Kluthf, G.; Nowakk, C. and Müller, M., 2019. Attitudes towards returning wolves (Canis lupus) in Germany: Exposure, information sources and trust matter. Biological Conservation. Vol. 234, pp: 202-210.
48
Williams, C.K.; Ericsson, G. and Heberlein, T.A., 2002. A quantitative summary of attitudes towards wolves and their reintroduction (1972-2000). Wildl. Soc. Bull. Vol. 30, pp: 1-10.
49
Zedrosser, A.; Steyaert, S.M.; Gossow, H. and Swenson, J.E., 2011. Brown bear conservation and the ghost of persecution past. Biological Conservation. Vol. 144, No. 9, pp: 2163-2170.
50
Zinn, H. and Pierce, C., 2002. Values, gender, and concern about potentially dangerous wildlife. Environ. Behav. Vol. 34, pp: 239-256.
51
Zuur, A.; Leno.; E. and Elphick, Ch., 2010. A protocol for data exploration to avoid commonstatistical problems. Methods in Ecology and Evolution. Vol. 1, pp: 3-14.
52
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تلفات جادهای جانوران در حومه شهر (مطالعه موردی: کمربندی جنوبی شهر رباط کریم)
تلفات جاده ای یکی از پیامدهای مخرب توسعه انسان محور بر زیستگاه های حیات وحش است. افزایش تراکم جاده ها و عبور آن ها از درون زیستگاه های حیات وحش به یکی از عوامل تهدید کننده جمعیت های گونه های جانوری تبدیل شده است. کمربندی جنوبی شهر رباط کریم در مجاورت کاربری های غالب کشاورزی، زراعی و باغی و در نتیجه زیستگاه های گونه های جانوری قرار گرفته که همواره تلفات جاده ای بر جمعیت جانوران آثار مخربی داشته است. در این مطالعه، با استفاده از ثبت مکانی تصادفات گونه های جانوری در کمربندی جنوبی در یک دوره 170 روزه، گونه های حساس تر به تلفات جاده ای، نقاط داغ و تاثیر زمان بر نرخ تصادفات جاده ای بررسی شد. در مجموع تعداد 37 فرد حیوان در طی 34 روز حادثه در حین عبور از جاده کشته شدند که متعلق به چهار گونه پستاندار، یک گونه پرنده و یک گونه خزنده بودند. نتایج نشان داد که تعداد تلفات جاده ای گونه سگ (Canis familiaris) بیش ترین میزان است. تعداد تلفات جاده ای گونه روباه قرمز (Vulpes vulpes) در ساعات شب که توام با تاریکی هوا است، نسبت به سایر گونهها بیش تر و تعداد تلفات جانوری در بهمن نسبت به سایر ماه ها بیش ترین و برابر با هشت فرد بوده است. از میان کاربری های موجود، در نزدیکی کاربری های کشاورزی، زراعی و باغی، تعداد تلفات جاده ای بیش تر دیده شد بدین علت که در طول مسیر جاده نقاط داغی وجود دارد که در آن تعداد تلفات حیوانی زیاد است و تعداد این نقاط پنج عدد محاسبه گردید. به طور کلی نرخ تردد پایین خودروها و نبود روشنایی در جاده (تیرهای چراغ برق) و وجود حداقل نور چراغ خودروها که عامل کوری موقتِ جانوران در شب است، از مهم ترین علل تلفات جاده ای در مطالعه حاضر است.
http://www.aejournal.ir/article_132604_4e139ebb5c034ebe98c2ffaf26cd235f.pdf
2021-04-21
19
26
10.22034/aej.2021.132604
تلفات جاده ای
نقاط داغ
کاربری اراضی
گونه های جانوری
زمان حادثه
کمربندی جنوبی رباط کریم
محمد
عسگری
mamadmirza@gmail.com
1
گروه جنگلداری و اقتصاد جنگل، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
احسان
عبدی
abdie@ut.ac.ir
2
گروه جنگلداری و اقتصاد جنگل، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
افشین
علیزاده شعبانی
ashabani@ut.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، ا.؛ احمدزاده، ف. و نعیمی، ب.، 1397. مناطق داغ زیستگاهی خانواده گربه سانان تحت اقلیم کنونی در ایران. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 10، شماره 4، صفحات 1 تا 12.
1
داده های ایستگاه هواشناسی سینوپتیک فرودگاه امام خمینی (ره). سال 1396 (2017).
2
دستورالعمل تهیه پروژه راه های جنگلی. نشریه شماره 148، سازمان مدیریت و برنامه ریزی کشور، معاونت امور فنی، دفتر امور فنی، تدوین معیارها و کاهش خطر پذیری ناشی از زلزله، 1384. انتشارات سازمان مدیریت و برنامه ریزی کشور. چاپ دوم، 198 صفحه.
3
بی نام. 1397. برآورد نیاز آبی گونه های درختی در عرصه و گلخانه تحت تنش های مختلف آبی در رباط کریم. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران. 271 صفحه.
4
قانون مجازات اسلامی، تاریخ تصویب: 01/02/1392. سایت مرکز پژوهشهای مجلس شورای اسلامی. https://rc.majlis.ir/fa/law/show/845048
5
محمدی، ع.؛ الماسیه، ک. و ادیبی، م.، 1396. بررسی نقاط داغ تلفات جاده ای حیات وحش در ذخیره گاه زیست سپهر توران. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 4، صفحات 11 تا 18.
6
مصطفی، م.؛ پارساخو، ا. و لطفعلیان، م.، 1394. راهکارهای کاهش اثرات محیط زیستی جاده های جنگلی. مجله تراکم جاده. شماره 84، صفحات 89 تا 200.
7
همامی، م.؛ سلیاری، ج. و اسمعیلی، س.، 1395. بررسی تنوع و الگوی تلفات جاده ای حیات وحش در پارک ملی گلستان. پژوهش های محیط زیست. سال 7، شماره 14، صفحات 215 تا 224.
8
Alves da Rosa, C. and Buger, A., 2012. Seasonality and habitat types affect road kill of neotropical birds. Journal of Environmental management. Vol. 97, pp: 1-5.
9
Ashley, E.P. and Robinson, J.T., 1996. Road mortality of amphibians, reptiles and other wildlife on the Lomg Point Causeway, Lake Erie, Ontario. Canadian Field- Naturalist. Vol. 110, pp: 404-412.
10
Barthelmess, E.L. and Brooks, M.S., 2010. The influence of body-size and diet on roadkill trends in mammals. Biodiversity Conservation. Vol. 19, pp: 1611-1629.
11
Becker, S.A.; Nielson, R.M.; Brimeyer, D.G. and Kauffman, M.J., 2011. Spatial and temporal characteristics of Moose highway crossing during winter in the Bufallo Fork valley, Wyoming. Alces. Vol. 47, pp: 69-81.
12
Bernardino, F.S. and Dalrymple, G.H., 1992. Seasonal activity and road mortality of the snakes of the Pa-hay-okee wetlands of the Everglades National Park, USA. Biological Conservation. Vol. 72, pp: 71-75.
13
Bright, P.W.; Balmforth, Z. and Macpherson, J.L., 2014. The effect of changes in traffic flow on mammal road kill counts, Applied Ecology and Environmental Research. Vol. 13, No. 1, pp: 171-179.
14
Canal, D.; Camacho, C.; Martín, B.; de Lucas, M. and Ferrer, M., 2018. Magnitude, composition and spatiotemporal patterns of vertebrate roadkill at regional scales: a study in southern Spain. Animal Biodiversity and Conservation. Vol. 41, No. 2, pp: 281-300.
15
Clevenger, A.P.; Chruszcz, B. and Gunson, K.E., 2003. Spatial patterns and factors influencing small vertebrate fauna road-kill aggregations. Biological Conversation. Vol. 109, pp: 15-26.
16
Forman, R.T.; Sperling, D.; Bissonette, J.A.; Clevenger, A.P.; Cutshall, C.D.; Dale, V.H. and Jones, J., 2003. Road ecology: science and solutions. Island press.
17
Fowle, S.C., 1990. The painted turtle in the Mission Valley of western Montana. Master’s thesis, University of Montana, Missoula.
18
Gonser, A.R.; Jensen, R.R. and Wolf, S.E., 2009. The spatial ecology of deer-vehicle collision. Applied Geography. Vol. 29, pp: 527-532.
19
Grilo, C.; Bissonette, J.A. and Santo-Reis, M., 2009. Spatial- temporal patterns in Mediterranean carnivore road casualties: Consequences for mitigation. Vol. 142, pp: 301-313.
20
Gunson, K.E.; Mountrakis, G. and Quackenbush, L.J., 2011. Spatial wildlife vehicle collision models: A review of current work and its application mitigation projects. Journal of Environmental Management. Vol. 92, pp: 1074-1082.
21
Haines, A.M.; Tewes, M.E.; Laack, L.L.; Grant, W.E. and Young, J., 2005. Evaluating recovery strategies for an ocelot (Leopardus pardalis) population in the United States. Biological Conservation. Vol. 99, pp: 331-340.
22
Harris, L.D. and Scheck, J., 1991. From implications: The dispersal Corridor principle applied to the conservation of biological diversity. In Nature Conservation 2: The role of corridors, edited by Saunders, D.A. and Hobbs, R.J., pp: 189-220. Chipping Norton, Australia: Surrey Beatty
23
Inger, R., 2016. Ecological Role of Vertebrate Scavengers in Urban Ecosystems in the UK. Ecology and Evolution. Vol. 6, pp: 7015-723.
24
Mohammadi, A.; Kaboli, M.; Almasieh, K.; Anthont, P.; Clevenger, M.; Fatemizadeh, F.; Rezaei, A. and Jowkar, H., 2018. Road expansion: A challenge to conservation of mammals, with particular emphasis on the endangered Asiatic cheetah in Iran. Journal for nature conservation. Vol. 43, pp: 8-18.
25
Lagos, L.: Picos, J. and Valero, E., 2012. Temporal pattern of wild ungulate related traffic accidents in northwest Spain. European Journal of Wildlife Researches. Vol. 58, pp: 661-668.
26
Lesinki, G.; Sikora, A. and Olszewski, A., 2011. Bat casualties on a road crossing a mosaic landscape. European Journal of Wildlife Researches. Vol. 57, pp: 217-223.
27
McDonald, P.J., 2012. Snakes on roads: An arid Australian perspective. Journal of arid Environment. Vol. 79, pp: 116-119.
28
Munguira, M.L. and Thomas, J.A., 1992. Use of road verges by butterfly and burnet populations, and the effect of roads on adult dispersal and mortality. Journal of Applied Ecology. Vol. 29, pp: 316-329.
29
Rodney van der, R.; Smith, D.J. and Grilo, C., 2015. Handbook of road ecology, Oxford publisher. ISBN 978-1 118-56818-7.
30
Schwartz, A.L.; Williams, W.; Harry, F.;Chadwick,E.; Thomas, R.J. and Perkins, S.E., 2018. Roadkill scavenging behaviour in an urban environment. Journal of Urban Ecology. Vol. 4, No. 1, pp: 1-7.
31
Skorka, P.; Lenda, M.; Moron, D.; Kalarus, K. and Tryjanowski, P., 2013. Factors affecting road mortality and the suitability of road verges for butterflies. Biological Conservation. Vol. 159, pp: 148-157.
32
Taylor, B.D. and Goldingay, R.L., 2004. Wildlife road kills on three major roads in nourth eastern New South Wales. Wildlife Research. Vol. 31, pp: 83-91.
33
Taylor, S.K.; Buergelt, C.D.; Roelke-Parker, M.E.; Homer, B.L. and Rotstein, D.S., 2002. Causes of mortality of free-ranging Florida panthers. Journal of Wildlife Diseases. Vol. 38, No. 1, pp: 107-114.
34
Watch out for animals in the road, State farm. 2015. Archived from the original on 2016-03-07 Retrived.
35
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تنوع و فراوانی جامعه خفاشها با استفاده از روش زیست صوت شناسی (بیوآکوستیک) در اکوسیستم کوهستانی- جنگلی محدوده شهرستان رودبار-گیلان
تنوع گونه ای از بارزترین خصوصیات یک جامعه زیستی است و تنوع خفاشان به عنوان شاخص زیستی در اکوسیستم های کوهستانی-جنگلی مطرح می باشند. هدف از این مطالعه برآورد پارامترهای جامعه خفاشان با استفاده از روش زیست صوت شناسی (بیوآکوستیک) در جنگل های هیرکانی محدوده شهرستان رودبار استان گیلان بوده است. نمونه برداری در فصل تابستان (تیر و مرداد) 1398 و با استفاده از دستگاه ضبط خودکار فرکانس آوای خفاش (Bat Logger) در محدوده زیستگاه تولیدمثلی (Reproductive) و خوراک جویی (Foraging) خفاشان انجام شد. در مجموع 20 گونه خفاش از سه خانواده و هشت جنس مختلف در محدوده مطالعاتی شناسایی گردید. جنس Myotis با هشت گونه و بعد از آن جنس Pipistrellus با چهار گونه بیش ترین تعداد گونه ها را به خود اختصاص داده اند. جنس های PlecotusوNyctalus هر کدام با دو گونه و جنس های Rhinolophus و Miniopterus و Barbastella و Eptesicus هر کدام با یک گونه کم ترین تعداد گونه ها را به خود اختصاص داده اند. غنای گونه ای به روش جک نایف برابر با (7-18/35) 26/9 برآورد گردیده است. معیار تنوع سیمپسون برابر با (77/81-0/0) 0/79 و معیار یکنواختی اسمیت و ویلسون برابر با 0/22 برآورد گردید. به طور کلی مشخص گردید که منطقه مورد مطالعه به دلیل برخورداری از زیستگاه های متنوع کوهستانی، جنگلی، آبی و کشاورزی از تنوع بالایی از خفاشان برخوردار است. در نهایت با توجه به کاربرد روش زیست صوت شناسی در برنامه های حفاظت و مدیریت تنوع زیستی جنگل، پیشنهاد می شود که از دستگاه های BATLOGGER (M, C) به دلیل سهولت استفاده و کارآیی در نمونه برداری صحرایی، در پایش اکوسیستم های کوهستانی-جنگلی در سطح سیمایسرزمین استفاده گردد.
http://www.aejournal.ir/article_132651_1fc5f19d7b3d9dc953750d798cb80b32.pdf
2021-04-21
27
36
10.22034/aej.2021.132651
خفاشان
زیست صوت شناسی
تنوع و فراوانی
جنگل های هیرکانی
شهرستان رودبار
شیوا
پیروی لطیف
shivapayravi@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده فنی و مهندسی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
رخشاد
حجازی
rokhshadhejazi@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده فنی و مهندسی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
سهراب
اشرفی
sohrab.ashrafi@ut.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
سید علی
جوزی
sajozi@yahoo.com
4
گروه محیط زیست، دانشکده فنی و مهندسی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
اجتهادی، ح.؛ سپهری، ع. و عکافی، ح.، 1391. روش های اندازه گیری تنوع زیستی. چاپ دوم. انتشارات دانشگاه فردوسی مشهد. 230 صفحه.
1
اکملی، و.، 1396. تبارزایی خفاش های دم موشی جنس Rhinopma (خانواده Rhinopomatidae) در ایران براساس ژن D-loop. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 3. صفحات 65 تا 72.
2
توحیدیفر، م.؛ موزر، م.؛ زهزاد، ب. و قدیریان، ط.، 1395. پروژه مدیریت چندمنظوره جنگل های خزری. گزارش تحلیلی تنوع زیستی جنگل های خزری. سازمان جنگل ها، مراتع و آبخیزداری کشور. UNDP، gef. 45 صفحه.
3
جهانی صیاد نوبری، م.؛ اسدیان نارنجی، س. و نیک پی، ع.، 1395. اولین گزارش خفاش Myotis capaccinii (Chiroptera: Vespertilionidae) از شمال ایران. نوزدهمین کنگره ملی و هفتمین کنگره بین المللی زیست شناسی. تبریز، ایران.
4
فتحی پور، ف.؛ اکملی، و. و شریفی، م.، 1394. بررسی تنوع و پراکنش خفاش های نعل اسبی در استان ایلام. دومین کنگره ملی زیست شناسی و علوم طبیعی ایران. تهران، ایران.
5
قدیریان، ط.، 1396. فصلنامه پستانداران. جلد 2، شماره 2، پیاپی 4.
6
کرمی، م.؛ قدیریان، ط. و فیض الهی، ک.، 1395. اطلس پستانداران ایران. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. 294 صفحه.
7
صادقی پور حلیمه جانی، س.، 1394. بررسی راهکارهای توسعه گردشگری ماجراجویانه در شهرستان رودبار با تأکید بر غار. پایان نامه کارشناسی ارشد. رشته جغرافیا و برنامه ریزی گردشگری. دانشگده علومانسانی دانشگاه آزاد اسلامی واحد رشت. 171 صفحه.
8
یعقوبی رستمی، م.؛ کمی، ح.؛ باقریان یزدی، ع. و اخلی، ن.، 1399. اولین گزارش خفاش نعل اسبی مدیترانهای (Rhinolophus euryale) در استان مازندران. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 12، شماره 2، صفحات 11 تا 20.
9
Adams, A.M.; Jantzen, M.K.;Hamilton,R.M.andFenton, M.B., 2012. Do you hear what I hear? Implications of detector selection for acoustic monitoring of bats. Methods in Ecology and Evolution. Vol. 3, pp: 992-998.
10
Akmali, V.; Sharifi, M. and Farasat, H., 2004. Habitat selection by the Common Pipistrelle, Pipistrellus pipistrellus s. I. (Chiroptera: Vespertilionidae), in the Dinevar region of western Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 33, pp: 43-50.
11
Bader, E.; Bontadina, F.; Frey-Ehrenbold, A.; Schönbächler, C.; Zingg, P.E. and Obrist, M.K., 2018. Guidelines for the recording, analysis and validation of bat calls in Switzerland. Report of the Swiss Bat Bioacoustics Group SBBG, Version 1.1e, 19 p.
12
Battersby, J., 2010. Guidelines for Surveillance & Monitoring of European Bats. EUROBATS Publication Series No. 5. UNEP/EUROBATS Secretariat, Bonn, Germany. 95 p.
13
Benda, P.; Faizolâhi, K.; Andreas, M.; Obuch, J.; Reiter, A.; Ševčík, M.; Uhrin, M.; Vallo, P. and Ashrafi, S., 2012. Bats (Mammalia: Chiroptera) of the Eastern Mediterranean and Middle East. Part 10. Bat fauna of Iran. Acta Societatis Zoologicae Bohemicae.Vol.76, pp: 163-582.
14
Brabant, R.; Laurent, Y.; Dolap, U.; Degraer, S. and Poerink, B.J., 2018. Comparing the results of four widely used automated bat identification software programs to identify nine bat species in coastal Western Europe. Belgian Journal of Zoology. Vol. 148, No. 2, pp: 119-128.
15
Fathipour, F.; Sharifi, M. and Akmali, V., 2016. Distribution of Cavernicolous Bat Fauna in Ilam Province, Western and Southwestern of the Iranian Plateau. Iranian Journal of Animal Biosystematics. Vol. 12, No. 1, pp: 97-110.
16
Fenton, M.B. and Simmons, N.B., 2014. Bats: A World of Science and Mystery. Chicago, University of Chicago Press. 240 p.
17
Fenton, M.B.; Acharya, L.; Audet, D.; Hickey, M.B.C.; Merriman, C.; Obrist, M.K. and Syme, D.M., 1992. Phyllostomid bats (Chiroptera: Phyllostomidae) as indicators of habitat disruption in the Neotropics. Biotropica. Vol. 24, pp: 440-446.
18
Fenton, M.B.; Grinnell, A.; Popper, A.N. and Fay, R.R., 2016. Bat bioacoustics. Springer Handbook of Auditory Research. Springer, New York, NY. Vol. 54, 304 p.
19
Flaquer, C.I.; Torre, I. and Arrizabalaga, A., 2007. Comparison of sampling methods for inventory of bat communities. Journal of Mammalogy. Vol. 88, pp: 526-533.
20
García-Morales, R.; Moreno, C.E.; Badano, E.I.; Zuria, I.; Galindo-González, J.; Rojas-Martı´nez A.E. and A´vila-Go´mez, E.S., 2016. Deforestation Impacts on Bat Functional Diversity in Tropical Landscapes. PLOS ONE. Vol. 11, No. 12, e0166765 p.
21
Horn, J.W.; Arnett, E.B. and Kunz, T.H., 2008. Behavioral responses of bats to operating wind turbines. Journal of Wildlife Management. Vol. 72, pp:123-132.
22
Hutson, A.M.; Mickleburgh, S.P.; and Racey, P.A., 2001. Microchiropteran bats: global status survey and conservation action plan. IUCN/SSC Chiroptera Specialist Group. IUCN, Gland, Switzerland and Cambridge, UK. x + 258 p.
23
Jones, G.; Jacobs, D.S.; Kunz, T.H.; Willig, M.R. and Racey, P.A., 2009. Carpe Noctem: The importance of bats as bio indicators. Endangered Species Research. Vol. 8, pp: 93-115.
24
Kasso, M. and Balakrishnan, M., 2013. Ecological and Economic Importance of Bats (Order Chiroptera). Review Article. ISRN Biodiversity. pp: 1-9.
25
Krebs, C.J., 2014. Ecological methodology. 3rd edition. 745 p.
26
Krebs, C.J., 2009. Ecology: The experimental analysis of distribution and abundance. San Francisco, CA: Pearson Benjamin Cummings.
27
Kunz, T.; Braun de Torrez, E.; Bauer, D.; Lobova, T. and Fleming, T., 2011. Ecosystem services provided by bats. Annals of the New York Academy of Sciences. Vol. 1223, pp: 1-38.
28
Kuenzi, A.J. and Morrison, M.L., 1998. Detection of bats by mist-nets and ultrasonic sensors. Wildlife Society Bulletin. Vol. 26, pp: 307-311.
29
MacSwiney, G.; Clarke, F.M. and Racey, P.A., 2008. What you see is not what you get: the role of ultrasonic detectors in increasing inventory completeness in Neotropical bat assemblages. Journal of Applied Ecology. Vol. 45, pp: 1364-1371.
30
Naderi, S.; Dietz, C.; Mirzajani, A. and Mayer, F., 2017. First record of Nathusius’ Pipistrelle, Pipistrellus nathusii (Mammalia: Chiroptera) from Iran, Zoology in the Middle Eas. Vol. 63, No. 1, pp: 93-94.
31
Obrist, M.K., 1995. Flexible bat echolocation: the influence of individual, habitat, and conspecifics on sonar design. Behavorial Ecology and Sociobiology. Vol. 36, pp: 207-219.
32
O’Farrell, M.J. and Gannon, W.L., 1999. A comparison of acoustic versus capture techniques for the inventory of bats. Journal of Mammalogy. Vol. 80, pp: 24-30.
33
Russo, D.; Ancillotto, L. and Jones, G., 2018. Bats are still not birds in the digital era: echolocation call variation and why it matters for bat species identification. Canadian Journal of Zoology. Vol. 96, No. 2, pp: 63-78.
34
Russo, D. and Voigt C.C., 2016. The use of automated identification of bat echolocation calls in acoustic monitoring: A cautionary note for a sound analysis. Ecological Indicators. Vol. 66, pp: 598-602.
35
Russo, D. and Jones, G., 2002. Identification of twenty-two bat species (Mammalia: Chiroptera) from Italy by analysis of time-expanded recordings of echolocation calls. Journal of Zoology. Vol. 258, No. 1, pp: 91-103.
36
Russo, D. and Jones, G., 2003. Use of foraging habitats by bats in a Mediterranean area determined by acoustic surveys: conservation implications. Ecography. Vol. 26, pp: 197-209.
37
Russo, D. and Jones, G., 2002. Identification of twenty-two bat species (Mammalia: Chiroptera) from Italy by analysis of time-expanded recordings of echolocation calls. Journal of Zoology. Vol. 258, No. 1, pp: 91-103.
38
Silvy, N.J., 2012. The wildlife techniques manual. 7th ed. The Johns Hopkins University Press. 686 p.
39
Williams, B.K.; Nichols, J.D. and Conroy, M.J., 2002. Analysis and Management of Animal, modeling, estimation, and decision making. Academic Press, San Diego, CA. 817 p.
40
Wordley, C.F.R.; Foui, E.K.; Mudappa, D.; Sankaran, M. and Altringham, J.D., 2014. Acoustic Identification of Bats in the Southern Western Ghats, India. Acta Chiropterologica. Vol. 16, No. 1, pp: 213-222.
41
ORIGINAL_ARTICLE
تحلیل توزیع فضایی پستانداران شاخص در منطقه شکارممنوع اشکورات با استفاده از روش یادگیری درختی جنگل تصادفی
در ایران مناطق شکارممنوع به منظور حفظ تنوع زیستی به مدت 3 تا 5 سال تحت مدیریت قرار می گیرند تا در صورت بهبود شرایط زیستگاهی و جمعیت وحوش به مناطق 4 گانه تحت مدیریت سازمان حفاظت محیط زیست ملحق شوند. مدل های مطلوبیت زیستگاه می توانند به عنوان یک ابزار، ارزیابی سریعی از وضعیت گونه های شاخص به دست دهند. تا با پشتوانه قوی ارتقا درجه حفاظتی مناطق شکارممنوع انجام گیرد. منطقه شکارممنوع اشکورات با تنوع زیستگاهی بالا یکی از این مناطق است. هدف این مطالعه ارزیابی وضعیت 4 گونه شاخص منطقه شامل کل بز (Capra aegagrus)، شوکا (Capreolus Capreolus)، خرس قهوه ای (Ursus arctos) و پلنگ (Panthera pardus) است. در این راستا از مدل جنگل تصادفی استفاده شد و اعتبار مدل با استفاده از آماره های مساحت سطح زیر منحنی (AUC)، میانگین مجذور مربعات (RMSE) و میانگین آنتروپی (MXE) متقاطع ارزیابی گردید. نتایج ارزیابی مدل نشان داد که روش جنگل تصادفی در اجرا موفق عمل کرده است. ارتفاع یک عامل در مطلوبیت زیستگاه های خرس، کل و بز و شوکا ارزیابی شد در حالی که نزدیکی به طعمه بیش ترین تأثیر را بر روی توزیع پلنگ داشت. وسعت زیستگاه مطلوب برای خرس، پلنگ، شوکا و کل و بز به ترتیب برابر 34/79، 2/12، 3/43 و 11/34 درصد از کل منطقه است. توزیع فضایی لکه های زیستگاهی گونه های مذکور حاکی از وجود تنوع زیستگاهی بالا در منطقه است که نقش پررنگ این منطقه را در حفاظت از تنوع زیستی گونه های شاخص مذکور آشکار می کند و ارتقا درجه حفاظتی آن می تواند بسیار از چالش های پیش روی منطقه را حذف کند.
http://www.aejournal.ir/article_132684_955a0903795c578e81867d883f75b865.pdf
2021-04-21
37
46
10.22034/aej.2021.132684
حد آستانه
منطقه شکارممنوع اشکورات
مطلوبیت زیستگاه
جنگل تصادفی
زینب
حسین نژاد
zeinab.hoseinnejad@gmail.com
1
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست کرج، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
پیمان
کرمی
peymankarami1988@gmail.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، ایران
AUTHOR
حمید
گشتاسب
meigooni1959@gmail.com
3
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست کرج، کرج، ایران
AUTHOR
باقر
نظامی بلوچی
nezamibagher@gmail.com
4
گروه محیط زیست طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست کرج، کرج، ایران
AUTHOR
امیدی، م.؛ کابلی، م. و کرمی، م.، 1389. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه پلنگ ایرانی (Panthera pardus saxicolor, Pocock 1927) به روش تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی (ENFA) در پارک ملی کلاه قاضی اصفهان. نشریه علوم و فنّاوری محیط زیست. دوره 12، شماره1، صفحات 137 تا 148.
1
بخشی، ح.؛ سلمان ماهینی، ع.؛ وارسته مرادی، ح. و حسنی، م.، 1394. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه شوکا (Capreolus capreolus) با استفاده از روش تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی در پارک ملی گلستان. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 7، شماره 4، صفحات 31 تا 42.
2
بخشی، ح.، 1392. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه شوکا (Capreolus capreolus) با استفاده از روش تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی در پارک ملی گلستان. پایان نامه کارشناسی ارشد محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 102 صفحه.
3
حسین نژاد، ز.، 1394. ارزیابی توان اکولوژیکی منطقه شکارممنوع اشکورات جهت ارتقا به سطوح حفاظتی بالاتر. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده محیط زیست کرج.
4
حسینی، س .؛ ریاضی، ب.؛ شمس اسفندآباد، ب. و نادری، م.، 1396. ارزیابی مطلوبیت زیستگاه کل و بز (Capra aegagrus) در استان گلستان. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 2، صفحات 9 تا 16.
5
خالوندی، ا.، 1395. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه پازن (Capra aegagrus) در منطقه حفاظت شده و پناهگاه حیات وحش با استفاده از روش آنتروپی بیشینه (MaxEnt). پایان نامه کارشناسی ارشد محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست دانشگاه ملایر. 90 صفحه.
6
ریاضی، ب.؛ مطهری، س. و امیراصلانی، ف.، 1394. ارزیابی مناطق شکار ممنوع به منظور ارتقا به مناطق حفاظت شده (مطالعه موردی: منطقه شکار ممنوع- سفید کوه آرسک شهرستان دامغان). فصلنامه محیط زیست طبیعی. دوره 68، شماره 1، صفحات 53 تا 65..
7
شعاعی، ا.؛ قلی پور، م.؛ رضایی، ح. و یارمحمدی، ث.، 1396. ارزیابی مطلوبیت زیستگاه پلنگ ایرانی (Panthera pardus saxicolor, Pocock 1927) با روش آنتروپی بیشینه (MaxEnt) در پارک ملی تندوره در طی فصول تابستان و پاییز. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره1، صفحات 21 تا 30.
8
صفری، س. و براتلو، ع.، 1395. قسمت پنجم: ویژگی عملکردی تست و سطح زیر منحنی راک. مجله طب اورژانس ایران. دوره3، شماره3، صفحات 119 تا 121.
9
عبیداوی، ز.؛ رنگزن، ک.؛ میرزائی، ر. و کابلی زاده، م.، 1395. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه خرس قهوه ای در منطقه حفاظت شده شیمبارو، استان خوزستان. فصلنامه اکولوژی کاربردی. جلد 5، شماره 17، صفحات 61 تا 72.
10
عطایی، ف.؛ کرمی، م. و کابلی، م. 1391. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه تابستانه خرس قهوه ای (Ursus arctos syriocus) در منطقه حفاظت شده البرز جنوبی . محیط زیست طبیعی. دوره 65، شماره 2، صفحات 235 تا 245.
11
فلاحتی، س.، 1397. بررسی وضعیت زیستگاه خرس قهوه ای (Ursus arctos) از منظر سیمای سرزمین در منطقه حفاظت شده قلاجه. پایان نامه کارشناسی ارشد محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر. 1444 صفحه.
12
کرمی، پ.؛ شایسته، ک. و اسماعیلی، م.، 1398. بررسی وضعیت پراکنش خرس قهوه ای (Ursus arctos Linnaeus1758) در منطقه حفاظت شده سفید کوه استان لرستان. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 11، شماره 2، صفحات 1 تا 10.
13
کرمی، پ.؛ کمانگر، م.؛ نیکنام، ا. و بخشی، ح.، 1392. مدل سازی پراکنش بالقوه شوکا (Capreolus Capreolus) در استان کرمانشاه با استفاده از الگوریتم آنتروپی بیشینه (MaxEnt). فصلنامه علوم و تکنولوژی محیط زیست. پذیرفته شده برای انتشار، انتشار آنلاین. http://jest.srbiau.ac.ir/article_9448.html
14
گشتاسب، ح.؛ عطایی، ف.؛ جهانی، ع.؛ صوفی، م. و احمدی، ن.، 1395. تأثیر پوشش گیاهی در انتخاب زیستگاه شوکا در منطقه حفاظت شده بوزین و مرخیل. فصلنامه محیط زیست طبیعی ایران. دوره 69، شماره 3، صفحات 803 تا 820.
15
محسنی، ف.؛ سبزقبائی، غ. و دشتی، س.، 1397. ارزیابی اثر بخشی مدیریتی مناطق حفاظت شده در راستای توسعه پایدار (مطالعه موردی: دز، شیمبار، کرایی). فصلنامه جغرافیا و پایداری محیط. سال 8، شماره 3، صفحات 99 تا 111.
16
میرسنجری، م. و سخنگو، ف.، 1397. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه کل و بز (Capra aegagrus) در منطقه حفاظت شده دنا با استفاده از الگوریتم آنتروپی بیشینه (MaxEnt). فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 10، شماره 2، صفحات 23 تا 30.
17
نظامی بلوچی، ب.، 1393. بررسی عادت های غذایی فصلی خرس قهوه ای سوری (Ursus arctos syriacus Linnaeus, 1758) در منطقه حفاظت شده البرز مرکزی. تاکسونومی و بیوسیستماتیک. سال 6، شماره 9، صفحات 27 تا 36.
18
نظامی بلوچی، ب.،1387. بوم شناسی خرس قهوه ای در محدوده امن البرز مرکزی. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه علوم و تحقیقات تهران.
19
وصالی، س.؛ وارسته مرادی، ح. و سلمان ماهینی، ع.، 1396. ارزیابی مطلوبیت زیستگاه پلنگ ایرانی (Panthera pardus saxicolor) با روش آنتروپی بیشینه در استان گلستان. فصلنامه پژوهش های محیط. دوره8، شماره 15، صفحات 101 تا 112.
20
Breiman, L., 1984. Classification and regression trees CA, Wadsworth International Groups.
21
Breiman, L., 2001. Random forest. Mach. Learn. Vol 45, pp: 5-32. doi:10.1023/A:1010933404324.
22
Chefaoui, R.M. and Lobo, J.M., 2008. Assessing the Effects of Pseudo-Absences on Predictive Distribution Model Performance, Ecological Modelling. Vol. 210, No. 4, pp. 478-486.
23
Cutler, D.R.; Edwards Jr, T.C.; Beard, K.H.; Cutler, A.; Hess, K.T.; Gibson, J. and Lawler, J.J., 2007. Random forests for classification in ecology. Ecology. Vol. 88, No. 11, pp: 2783-2792.
24
DeNormandi, J. and Edwards, T.C., 2002. The Umbrella Species Concept and Regional Conservation Planning in Southern California: A Comparative Study, Conservation Biology, April 2002.
25
Ebrahimi, A.; Farashi, A. and Rashki, A., 2017. Habitat suitability of Persian leopard (Panthera pardus saxicolor) in Iran in future. Environmental earth sciences. Vol. 76, No. 20, pp: 697.
26
Edgaonkar, A., 2008. Ecology of the leopard (Panthera pardus) in Bori wildlife sanctuary and Satpura national park, India. Gainesville, Fla, USA: University of Florida.
27
Erfanian, B.; Mirkarimi, H.S.; Salman Mahini, A. and Rezaei, H.R., 2013. A presence-only habitat suitability model for Persian leopard Panthera pardus saxicolor in Golestan National Park, Iran. Wildlife Biology. Vol. 19, pp: 170-178.
28
Farashi, A. and Shariati, M., 2017. Biodiversity hotspots and conservation gaps in Iran. Journal for nature conservation. Vol. 1, No. 39, pp: 37-57.
29
Frąckowiak, W.; Theuerkauf, J.; Pirga, B. and Gula, R., 2014. Brown bear habitat selection in relation to anthropogenic structures in the Bieszczady Mountains, Poland. Biologia. Vol. 69, No.7, pp: 926-930.
30
Gallardo, B. and Aldridge, D.C., 2013. Evaluating the combined threat of climate change and biological invasions on endangered species. Journal of Biological Conservation. Vol. 160, pp: 225-233.
31
Gavashelishvili, A. and Lukarevskiy, V., 2008. Modelling the habitat requirements of leopar Pantherapardusin west and central Asia. Applied Ecology. Vol. 45, pp: 579-588.
32
Graham, J. and Kimble, M., 2019. Visualizing uncertainty in habitat suitability models with the hyper‐envelope modeling interface, version 2. Ecology and evolution. Vol. 9, No. 1, pp: 251-264.
33
Harrington, F.A.Jr., 1977. A guide to mammals of Iran. Department of the environment, Iran.
34
Hastie, T.; Tibshirani, R. and Friedman, J.,2001. The elements of statistical learning: data mining, inference and prediction, In Springer series in statistics New York, Springer. 533 p.
35
Ineichen, P.; Graf, R.F. and Suter, W., 2015. Habitat selection of roe deer (Capreolus capreolus) in a landscape of fear shaped by human recreation (Doctoral dissertation, Master Thesis).
36
Mateo Sánchez, M.C.; Cushman, S.A. and Saura, S., 2014. Scale dependence in habitat selection: the case of the endangered brown bear (Ursus arctos) in the Cantabrian Range (NW Spain). International Journal of Geographical Information Science. Vol. 28, No. 8, pp: 1531-1546.
37
Mateo Sánchez, M.C.; Gastón, A.; García-Viñas, J.I.; Cuevas, J.; López-Leiva, C.; Fernández-Landa, A.; Algeet-Abarquero, N.; Marchamalo, M.; Fortin, M.J. and Saura, S., 2016. Seasonal and temporal changes in species use of the landscape: how do they impact the inferences from multi-scale habitat modeling?Landscape ecology. Vol. 31, No. 6, pp: 1261-1276.
38
Mi, C.; Huettmann, F.; Guo, Y.; Han, X. and Wen, L., 2017. Why choose Random Forest to predict rare species distribution with few samples in large under sampled areas? Three Asian crane species models provide supporting evidence. Peer J. Vol. 5, pp: e2849.
39
Nawaz, M.A., 2008. Ecology, genetics and conservation of Himalayan brown bears, PhD Thesis, Department of Ecology and Natural Resource Management, Norwegian University of Life Sciences. 224 p.
40
Ripple, W.J.; Estes, J.A.; Beschta, R.L.; Wilmers, C.C.; Ritchie, E.G.; Hebblewhite, M.; Berger, J.; Elmhagen, B.; Letnic, M.; Nelson, M.P.; Schmitz, O.J.; Smith, D.W.; Wallach, A.D. and Wirsing, A.J., 2014. Status and ecological effects of the world’s largest carnivores. Science. Vol. 343, pp: 124-148.
41
Swets, A., 1988. Measuring the accuracy of diagnostic systems. Science. Vol. 240, No. 4857, pp: 1285-1293.
42
Valente, A.M.; Marques, T.A.; Fonseca, C. and Torres, R.T., 2016. A new insight for monitoring ungulates: density surface modelling of roe deer in a Mediterranean habitat. European journal of wildlife research. Vol. 62, No. 5, pp: 577-587.
43
Van Cleave, E.K.; Bidner, L.R.; Ford, A.T.; Caillaud, D.; Wilmers, C.C. and Isbell, L.A., 2018. Diel patterns of movement activity and habitat use by leopards (Panthera pardus pardus) living in a human-dominated landscape in central Kenya. Biological conservation. Vol. 226, pp: 224-237.
44
Weinberg, P.; Jdeidi, T.; Masseti, M.; Nader, I.; desmet, K. and Cuzin, F., 2008. Capra aegagrus. In: IUCN Red List of Threatened Species.URL:http://www.iucnredlist.org.
45
Wu, W.; Li, Y. and Hu, Y., 2016. Simulation of potential habitat overlap between red deer (Cervus elaphus) and roe deer (Capreolus capreolus) in northeastern China. Peer J. Vol. 4, pp: e1756.
46
Ziółkowska, E.; Ostapowicz, K.; Radeloff, V.C.; Kuemmerle, T.; Sergiel, A.; Zwijacz-Kozica, T. and Selva, N., 2016. Assessing differences in connectivity based on habitat versus movement models for brown bears in the Carpathians. Landscape Ecology. Vol. 31, No. 8, pp: 863-1882.
47
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی چندشکلی تکنوکلئوتیدی در اگزون 3 ژن TLR4 و ارتباط آن با تعداد سلولهای سوماتیک شیر در گاوهای هلشتاین
ورم پستان یک بیماری التهابی شایع در صنعت گاو شیری جهان به شمار می رود که می تواند هزینه های زیادی را به این صنعت تحمیل کند. عوامل محیطی متعددی به همراه عامل ژنتیک در روند این بیماری و مقاومت در برابر آن نقش کلیدی ایفا می کنند. پروتئین TLR4 یک گیرنده خارج سلولی است که باعث شناسایی عوامل بیماری زا شده و سیستم ایمنی را تحریک به پاسخ می کند. هدف این مطالعه شناسایی چندشکلی موجود در اگزون 3 ژن TLR4 و بررسی همبستگی آن با تعداد سلول های سوماتیک موجود در شیر گاوهای هلشتاین شرکت کشت و صنعت و دامپروری مغان بود. در این مطالعه از 200 راس گاو در دو گروه 100 راسی با تعداد سلول های سوماتیک پایین (50000 تا 150000) و بالا (بیش تر از 200000) استفاده شد. توالی یابی اگزون 3 ژن مذکور و هم ترازی آن با توالی مرجع منجر به شناسایی یک چندشکلی تک نوکلئوتیدی از نوع جایگزینی نوکلئوتید C (با فراوانی 0/145) به جای T (با فراوانی 0/855) شد که باعث تغییر اسیدآمینه ایزولوسین به ترئونین می شود. آنالیز آماری نشان داد که شیر تولیدی گاوهای با ژنوتیپ CC به طور معنی داری تعداد سلول های سوماتیک کم تری نسبت به دو ژنوتیپ دیگر دارد (p <0/05). با توجه به همبستگی معنی دار چندشکلی تک نوکلئوتیدی موجود در اگزون 3 ژن TLR4 و تعداد سلول های سوماتیک در شیر، به نظر می رسد این ژن یک کاندیدا مناسب برای برنامه های اصلاحی در جهت ایجاد مقاومت در برابر ورم پستان باشد.
http://www.aejournal.ir/article_132721_bc471311158ed99c3113c403f4ac8867.pdf
2021-04-21
47
52
10.22034/aej.2021.132721
هلشتاین
ژن TLR4
سلولهای سوماتیک
ورم پستان
داود
صفری
safari.davod94@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
نعمت
هدایت ایوریق
hedayatuma@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
LEAD_AUTHOR
رضا
سید شریفی
reza_seyedsharifi@yahoo.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
میرداریوش
شکوری
shakory@uma.ac.ir
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
وحید
واحدی
vahedi.vahid59@gmail.com
5
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی مغان، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
رضا
خلخالی ایوریق
rezakhalkhali110@gmail.com
6
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
سیدشریفی، ر.؛ کراری نیری، ک.؛ هدایت ایوریق، ن.؛ سیف دواتی، ج. و بهلولی، م.، 1396. بررسی برخی صفات تیپ، تولید، تولیدمثل و ماندگاری در گاوهای هلشتاین استان اصفهان. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 3، صفحات 17 تا 26.
1
کمالی، س.؛ مکی، م.؛ احمدی، ر. و پورمهدی بروجنی، م.، 1399. بررسی ارتباط میزان کاهش نمره بدنی پس از زایمان، فصل و تعداد شیرواری بر بروز ورم پستان بالینی در گاو شیری. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 12، شماره 2، صفحات 31 تا 36.
2
Abebe, R.; Hatiya, H.; Abera, M.; Megersa, B. and Asmare, K., 2016. Bovine mastitis: prevalence, risk factors and isolation of Staphylococcus aureus in dairy herds at Hawassa milk shed, South Ethiopia. BMC Veterinary Research. Vol. 12, pp: 270.
3
Akira, S. and Takeda, K., 2004. Toll-like receptor signalling. Nature Reviews Immunology. Vol. 4, pp: 499-511.
4
Bradley, A. and Green, M., 2005. Use and interpretation of somatic cell count data in dairy cows. In Practice. Vol. 27, pp: 310-315.
5
De Vliegher, S.; Fox, L.K.; Piepers, S.; McDougall, S. and Barkema, H.W., 2012. Invited review: Mastitis in dairy heifers: Nature of the disease, potential impact, prevention, and control. Journal of Dairy Science. Vol. 95, pp: 1025-1040.
6
Dohoo, I.R. and Leslie, K.E., 1991. Evaluation of changes in somatic cell counts as indicators of new intramammary infections. Preventive Veterinary Medicine. Vol. 10, pp: 225-237.
7
El‐Domany, W.B.; Radwan, H.A.; Ateya, A.I.; Ramadan, H.H.; Marghani, B.H. and Nasr, S.M., 2019. Genetic Polymorphisms in LTF/EcoRI and TLR4/AluI loci as candidates for milk and reproductive performance assessment in Holstein cattle. Reproduction in Domestic Animals. Vol. 54, pp: 678-686.
8
Gopi, B.; Singh, R.V.; Kumar, S.; Kumar, S.; Chauhan, A.; Kumar, A. and Singh, S.V., 2020. Single-nucleotide polymorphisms in CLEC7A, CD209 and TLR4 gene and their association with susceptibility to paratuberculosis in Indian cattle. Journal of Genetics. Vol. 99, pp: 14.
9
Goldammer, T.; Zerbe, H.; Molenaar, A.; Schuberth, H.J.; Brunner, R.M.; Kata, S.R. and Seyfert, H.M., 2004. Mastitis increases mammary mRNA abundance of β-defensin 5, toll-like-receptor 2 (TLR2), and TLR4 but not TLR9 in cattle. Clinical and Diagnostic Laboratory Immunology. Vol. 11, pp: 174-185.
10
Mesquita, A.Q.D.; Mesquita, A.J.D.; Jardim, E.A.G.D.V. and Kipnis, A.P.J., 2012. Association of TLR4 polymorphisms with subclinical mastitis in Brazilian holsteins. Brazilian Journal of Microbiology. Vol. 43, pp: 692-697.
11
Mišeikienė, R.; Švedaitė, A.; Bižienė, R.; Pečiulaitienė, N. and Ugenskienė, R., 2020. The influence of TLR4 gene polymorphisms on milk quality and composition of Lithuanian Holstein cows. Mljekarstvo. Vol. 70, pp: 112-119.
12
Mishra, C.; Kumar, S.; Panigrahi, M.; Yathish, H.M.; Chaudhary, R.; Chauhan, A.; Kumar, A. and Sonawane, A.A., 2018. Single Nucleotide Polymorphisms in 5’Upstream Region of Bovine TLR4 Gene Affecting Expression Profile and Transcription Factor Binding Sites. Animal Biotechnology. Vol. 29, pp: 119-128.
13
Noori, R.; Mahdavi, A.H.; Edriss, M.A.; Rahmani, H.R.; Talebi, M. and Soltani-Ghombavani, M., 2013. Association of polymorphism in Exon 3 of toll-like receptor 4 gene with somatic cell score and milk production traits in Holstein dairy cows of Iran. South African Journal of Animal Science. Vol. 43, pp: 493-498.
14
Ogorevc, J.; Kunej, T. and Dovč, P., 2008. An integrated map of cattle candidat-e genes for mastitis: a step forward to new genetic markers. Acta Agricultural Slovenica. pp: 85-91.
15
Ogorevc, J.; Simčič, M.; Zorc, M.; Škrjanc, M. and Dovč, P., 2019. TLR2 polymorphism (rs650082970) is associated with somatic cell count in goat milk. PeerJ, Vol. 7, pp: e7340.
16
Radostits, O.M.; Gay, C.C.; Hinchcliff, K.W. and Constable, P.D., 2007. A textbook of the diseases of cattle, horses, sheep, pigs and goats. Veterinary Medicine. Vol. 10, pp: 2045-2050.
17
Riekerink, R.O.; Barkema, H.W.; Veenstra, W.; Berg, F.E.; Stryhn, H. and Zadoks, R.N., 2007. Somatic cell count during and between milkings. Journal of Dairy Science. Vol. 90, pp: 3733-3741.
18
Sabroe, I.; Read, R.C.; Whyte, M.K.; Dockrell, D.H.; Vogel, S.N. and Dower, S.K., 2003. Toll-like receptors in health and disease: complex questions remain. The Journal of Immunology. Vol. 171, pp: 1630-1635.
19
Seegers, H.; Fourichon, C. and Beaudeau, F., 2003. Production effects related to mastitis and mastitis economics in dairy cattle herds. Veterinary Research. Vol. 34, pp: 475-491.
20
Sharma, B.S.; Leyva, I.; Schenkel, F. and Karrow, N.A., 2006. Association of toll-like receptor 4 polymorphisms with somatic cell score and lactation persistency in Holstein bulls. Journal of Dairy Science. Vol. 89, pp: 3626-3635.
21
Swanson, K.M.; Stelwagen, K.; Dobson, J.; Henderson, H.V.; Davis, S.R.; Farr, V.C. and Singh, K., 2009. Transcriptome profiling of Streptococcus uberis-induced mastitis reveals fundamental differences between immune gene expression in the mammary gland and in a primary cell culture model. Journal of Dairy Science. Vol. 92, pp: 117-129.
22
Świderek, W.P.; Bhide, M.R.; Gruszczyńska, J.; Soltis, K.; Witkowska, D. and Mikula, I., 2006. Toll-like receptor gene polymorphism and its relationship with somatic cell concentration and natural bacterial infections of the mammary gland in sheep. Folia Microbiologica. Vol. 51, pp: 647-652.
23
Tiezzi, F.; Parker-Gaddis, K.L.; Cole, J.B.; Clay, J.S. and Maltecca, C., 2015. A genome-wide association study for clinical mastitis in first parity US Holstein cows using single step approach and genomic matrix re-weighting procedure. PLoS One. Vol. 10.
24
Usman, T.; Wang, Y.; Liu, C.; He, Y.; Wang, X.; Dong, Y.; Wu, H.; Liu, A. and Yu, Y., 2017. Novel SNPs in IL-17F and IL-17A genes associated with somatic cell count in Chinese Holstein and Inner-Mongolia Sanhe cattle. Journal of Animal Science and Biotechnology. Vol. 8, pp: 5.
25
Wang, X.; Xu, S.; Gao, X.; Ren, H. and Chen, J., 2007. Genetic polymorphism of TLR4 gene and correlation with mastitis in cattle. Journal of Genetics and Genomics. Vol. 34, pp: 406-412.
26
Wang, M.; Song, H.; Zhu, X.; Xing, S.; Zhang, M.; Zhang, H.; Wang, X.; Yang, Z.; Ding, X.; Karrow, N.A. and König, S., 2018. Toll-like receptor 4 gene polymorphisms influence milk production traits in Chinese Holstein cows. Journal of Dairy Research. Vol. 85, pp: 407-411.
27
White, S.N.; Taylor, K.H.; Abbey, C.A.; Gill, C.A. and Womack, J.E., 2003. Haplotype variation in bovine Toll-like receptor 4 and computational prediction of a positively selected ligand-binding domain. Proceedings of the National Academy of Sciences. Vol. 100, pp: 10364-10369.
28
Zheng, J.; Watson, A.D. and Kerr, D.E., 2006. Genome wide expression analysis of lipopolysaccharide-induced mastitis in a mouse model. Infection and Immunity. Vol. 74, pp: 1907-1915.
29
Zhou, H.; Cheng, L.; Gong, H.; Byun, S.O.; Edwards, G.R. and Hickford, J.G., 2017. Variation in the Toll-like Receptor 4 (TLR4) gene affects milk traits in dairy cows. Journal of Dairy Research. Vol. 84, pp: 426-429.
30
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی وضعیت تولیدمثل در گاوداری های صنعتی شیری استان قزوین
پژوهش حاضر به منظور بررسی برخی از فراسنجه های تولیدمثلی در گاوداری های صنعتی شیری استان قزوین انجام شد. برای انجام این تحقیق گاوداری های مورد مطالعه در پنج دسته ظرفیتی شامل گاوداری های با ظرفیت کم تر از 100 رأس، 199-100 رأس، 499-200 رأس، 999-500 رأس و بیش از 1000 رأس دسته بندی شدند. سپس خروجی اطلاعات مربوط به فراسنجه های تولیدمثلی از سامانه ثبت اطلاعات گاوداری ها اخذ و داده های حاصل در قالب طرح کاملاً تصادفی نامتعادل مورد آنالیز قرار گرفت. نتایج حاصل از این پژوهش نشان داد از نظر میانگین روز اولین تلقیح پس از زایش بین گروه های تیماری تفاوت معنی داری وجود نداشت. دوز اسپرم مصرفی به ازای هر آبستنی در تلیسه ها بین دسته های مختلف ظرفیتی تفاوت معنی داری داشت (P≤0/05) و در تیمار 1 و 2 بهتر از سایرین بود (به ترتیب 1/23 و 1/40 درصد). روزهای باز در گله های مورد مطالعه به طور میانگین 14/57±144/55 روز بود و از این نظر بین گروه های مختلف تیماری تفاوت معنی داری وجود نداشت. اگرچه از نظر درصد باروری گاو بین گله های مورد بررسی تفاوت معنی داری وجود نداشت، ولی باروری تلیسه ها بین گروه های مختلف تیماری تفاوت معنی داری داشت (P≤0/05) و تیمارهای 1 و 2 بهتر از سایر دسته های ظرفیتی بودند. میانگین روزهای خشک در گله های مورد بررسی 0/31±75/91 روز بود و بین تیمارها تفاوتی وجود نداشت. از نظر میزان سقط نیز بین تیمارهای مختلف تفاوت معنی دار بود و تیمار یک کم ترین میزان سقط را داشت (P≤0/05). به طور کلی نتایج این پژوهش نشان داد با افزایش ظرفیت گاوداری ها فراسنجه های تولید مثلی به طور منفی تحت تاثیر قرار می گیرند و میزان بروز نقایص تولید مثلی مانند سقط در آن ها افزایش می یابد.
http://www.aejournal.ir/article_132785_ec8dd3b14b419d32966b03fdc99d283b.pdf
2021-04-21
53
60
10.22034/aej.2021.132785
فراسنجه های تولید مثلی
بیماری
تلقیح
ظرفیت گاوداری
گاوشیری
مهدی
افتخاری
eftekharimehdi@gmail.com
1
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان قزوین، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، قزوین، ایران
LEAD_AUTHOR
احسان
شهرامی
eshahrami@gmail.com
2
مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان قزوین، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، قزوین، ایران
AUTHOR
امیر رضا
صفایی
amirrezasafaei@gmail.com
3
موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
AUTHOR
مسعود
مستشاری محصص
mostashari@gmail.com
4
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان قزوین، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، قزوین، ایران
AUTHOR
توحیدی، آ.؛ زارع شحنه، ا. و معتمدی، ا.، 1386. تعیین برخی عوامل مؤثر بر عملکرد تولیدمثل در دو گله گاو هلشتاین اصفهان. مجموعه مقالات دومین کنگره علوم دامی و آبزیان کشور، مؤسسه تحقیقات علوم دامی کشور. صفحات 1495 تا 1497.
1
عباسپور، ی.؛ مقدم، ع.ا.؛ ورمقانی، ص.؛ جعفری، ه.؛ سرحدی، ف. و مقصودی نژاد، ق.، 1390. بررسی شاخص های تولیدمثلی در گاوداری های شیری صنعتی استان ایلام. علوم دامی. دوره 24، شماره 90، صفحات 8 تا 13.
2
فراستی، س. و امیری نیا، س.، 1393. برآورد برخی از پارامترهای تولیدمثلی در گاوهای هلشتاین استان کرمانشاه. نشریه علوم دامی. شماره 105، صفحات 3 تا 10.
3
گرجی، ر.؛ قربانی،غ.؛ رحمانی، ح. و صادقی سفیدمزگی، ع.، 1394. تحلیل فنوتیپی باروری در گله های گاو شیری هلشتاین ایران. دوره 3، شماره 2، صفحات 149تا 162.
4
مهنانی، ا. و صادقی سفیدمزگی، ع.، 1397. بررسی علل و زیان مالی ناشی از حذف زودهنگام در گله های هلشتاین استان اصفهان. علوم دامی ایران. دوره 49، شماره 2، صفحات 311 تا 320.
5
هدایت، ن. و پوراسدآستمال، ک.، 1396. بررسی عوامل موثر بر حذف در گاوهای شیری هلشتاین شمال غرب ایران. پژوهش های تولیدات دامی. دوره 8، شماره 16، صفحات 183 تا 191.
6
Ansari-Lari, M.; Kafi, M.; Sokhtanlo, M. and Nategh Ahmadi, H., 2010. Reproductive performance of Holstein dairy cows in Iran. Tropical Animal Health and Production. Vol. 42, pp: 1277-1283.
7
Ferguson, J.D. and Skidmore, A., 2013. Reproductive performance in a select sample of dairy herds. Journal of dairy science. Vol. 96, pp: 1269-1289.
8
Grimard, B.; Freret, S.; Chevallier, A.; Pinto, A.; Ponsart, C. and Humblot, P., 2006. Genetic and environmental factors influencing first service conception rate and late embryonic/foetal mortality in low fertility dairy herds. Animal Reproduction Science. Vol. 91, pp: 31-44.
9
Jamrozik, J.; Fatehi, J.; Kistemaker, G.J. and Schaeffer, L.R., 2005. Estimates of genetic parameters for Canadian Holstein female reproduction traits. Journal of dairy science. Vol. 88, pp: 2199-2208.
10
Karakaya, E.; Yilmazbas-Mecitoglu, G.; Keskin, A.; Alkan, A.; Tasdemir, U.; Santos, J.E.P. and Gumen, A., 2014. Fertility in Dairy Cows after Artificial Insemination Using Sex-Sorted Sperm or Conventional Semen. Reproduction in Domestic Animals. Vol. 49, pp: 333-337.
11
Krpalkova, L.; Cabrera, V.E.; Kvapilik, J. and Burdych, J., 2016. Dairy farm profit according to the herd size, milk yield, and number of cows per worker. Agricultural Economics. Vol. 62, pp: 225-234.
12
Lee, L.A.; Ferguson, J.D. and Galligan, D.T., 1989. Effect of disease on days open assessed by survival analysis. Journal of dairy science. Vol. 71, pp: 1020-1026.
13
Lucy, M.C., 2001. Reproductive Loss in High-Producing Dairy Cattle: Where Will It End? Journal of dairy science. Vol. 84, pp: 1277-1293.
14
Mohammadi, G.R. and Sedighi, A., 2009. Reasons for culling of Holstein dairy cows in Neishaboor area in northeastern Iran. Iranian Journal of Veterinary Research. Vol. 10, No. 28, pp: 278-282.
15
Nienartowicz-Zdrojewska, A.; Dymarski, I.; Ymarski, I.; Sobek, Z. and Wolic, A., 2009. Culling reasons as related to lifetime dairy performance in Polish Friesian (Black and White) cows on Pawłowice farm in the years 1909- 2006. Animal Science Papers and Reports. Vol. 27, No. 3, pp: 173-180.
16
Oleggini, G.H.; Ely, L.O. and Smith, J.W., 2001. Effect of Region and Herd Size on Dairy Herd Performance Parameters. Journal of dairy science. Vol. 84, pp: 1044-1050.
17
Rethmeier, J.; Wenzlau, M.; Wagner, M.; Wiedemann, S. and Bachmann, L., 2019. Fertility parameters in German dairy herds: Associations with milk yield and herd size. Czech Journal of Animal Science. Vol. 64, pp: 459-464.
18
Sheldon, I.M.; Cronin, J.; Goetze, L.; Donofrio, G. and Schuberth, H.J., 2009. Defining postpartum uterine disease and the mechanisms of infection and immunity in the female reproductive tract in cattle. Biology of Reproduction. Vol. 81, pp: 1025-1032.
19
Vacek, M.; Standik, L. and Stipkova, M., 2007. Relationships between the incidence of health disorders and the reproduction traits of Holstein cows in the Czech Republic. Czech Journal of Animal Science. Vol. 52, No. 8, pp: 227-235.
20
Vergara, O.; Elzo, M.A. and Cerón-Muñoz, M.F., 2009. Genetic parameters and genetic trends for age at first calving and calving interval in an Angus-Blanco Orejinegro-Zebu multibreed cattle population in Colombia. Livestock Science. Vol. 126, pp: 318-322.
21
Walsh, S.W.; Williams, E.J. and Evans, A.C.O., 2011. A review of the causes of poor fertility in high milk producing dairy cows. Animal Reproduction Science. Vol. 123, pp: 127-138.
22
Weigel, K.A., 2006. Prospects for improving reproductive performance through genetic selection. Animal Reproduction Science. Vol. 96, pp: 323-330.
23
Weigel, K.A.; Palmer, R.W. and Caraviello, D.Z., 2002. Investigation of factors affecting voluntary and involuntary culling in expanding dairy herds in Wisconsin using survival analysis. Journal of Dairy Science. Vol. 86, pp: 1482-1486.
24
Williams, E.J.; Fischer, D.P.; Noakes, D.E.; England, G.C.W.; Rycroft, A.; Dobson, H. and Sheldon, I.M., 2007. The relationship between uterine pathogen growth density and ovarian function in the postpartum dairy cow. Theriogenology. Vol. 68, pp: 549-559.
25
ORIGINAL_ARTICLE
شاخص های تولیدی و تولیدمثلی بز خلخالی در زیست بوم های پرورشی آن
این مطالعه با هدف شناخت صفات تولیدی و تولیدمثلی جمعیت بز بومی خلخالی موسوم به بز آران در زیستگاه بومی آن و استحصال اطلاعات پایه برای بهبود بخشیدن به وضعیت پرورش و افزایش تولید در آینده انجام گرفت. برای اجرای این طرح، 20 روستا از سه زیست بوم مرکزی، خورش رستم و امامرود شهرستان خلخال به طور تصادفی و به روش انتصاب متناسب انتخاب و در هر روستا 3 گله مطالعه گردید. نتایج نشان داد که میانگین زایش 3/4±88/7 درصد، میانگین دو قلوزایی 4/8±11/11 درصد، میانگین وزن تولد بزغالههای نر 0/47±1/9 کیلوگرم و مادهها 0/45±1/78 کیلوگرم، میانگین وزن بلوغ جنسی نرها 2/3±12/5 و مادهها 2/88±16/73 کیلوگرم، فاصله بین دو زایش به طور متوسط 5/4±12/72 ماه، میانگین طول دوره شیردهی 45/3±167/1 روز، میانگین تولید شیر روزانه 230±760 گرم، میانگین چربی شیر 1/19±4/39 درصد، میانگین سن از شیرگیری 0/76 ± 5/56 ماه، وزن از شیرگیری بزغالهها 2/7±9/79 کیلوگرم و میانگین مو و کرک تولیدی/راس بز نر و ماده بالغ 116±222/3 گرم می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_132830_d8c880015ae008dbc91fded4f0bd6dab.pdf
2021-04-21
61
70
10.22034/aej.2021.132830
تولید
تولیدمثل
زیست بوم
اکبر
ابرغانی
akbarabarghani@yahoo.com
1
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان اردبیل، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اردبیل، ایران
LEAD_AUTHOR
محمود
صحرایی
m.sahraei2009@gmail.com
2
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان اردبیل، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اردبیل، ایران
AUTHOR
ابرغانی، ا. و صحرایی، م.، 1398. شاخص های نژادی، زیست سنجی و تغذیه ای بز خلخالی در زیستگاه بومی آن. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 11، شماره 2، صفحات 85 تا 94.
1
توکلیان، ج.، 1378. نگرشی بر ذخائر ژنتیکی دام و طیور بومی ایران. موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، کرج، ایران
2
خجسته کی، م. و حاجی رجبعلی ح.، 1394. آشنایی با پرورش بز سانن و آلپاین. سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی. تهران، ایران
3
دولتی قره درویشلو، و.؛ هدایت ایوریق، ن.؛ نیک بین، س. و بهمرام، ر.، 1396. آنالیزفیلوژنتیکی جمعیت بزهای خلخالی با استفاده ژن سیتوکروم b. مجله بیوتکنولوژی کشاورزی. دوره 9، شماره 3، صفحات 75 تا 86.
4
کریمی عوری، و.؛ هدایت ایوریق، ن.؛ سیدشریفی، ر. و نیک بین، س.، 1396. بررسی ساختار ژنتیکی و آنالیز فیلوژنتیکی جمعیت بز خلخالی با استفاده از ژنوم میتوکندری. فصلنامه علمی ژنتیک نوین. دوره 12، شماره 2، فصلنامه 217 تا 227.
5
هدایت ایوریق، ن.؛ نوروزی، ز.؛ سیدشریفی،ر. و عبدی، ح.، 1397. بررسی تنوع اگزون 4 ژن هورمون رشد و ارتباط آن با صفات شیر و چندقلوزایی در بزهای خلخالی. فناوری زیستی در کشاورزی. دوره 7، شماره 2، صفحات 21 تا 27.
6
AAI. 2019. Data on breeds of indigenous Italian goats. Italian Breeders Association.
7
ARCA. 2019. National indigenous breed information system. Spanish Ministery of Agriculture, Fisheries and Food.
8
Dereje, T.; Mengistu, U.; Getachew, A. and Yoseph, M., 2015. A review of productive and reproductive characteristics of indigenous goats in Ethiopia. Livestock Research for Rural Development. Vol. 27, No. 2, pp: 1-19.
9
Dickson-Urdaneta, L.; Torres-HernaÂndez, G.; Becerril PeÂrez, C.; GonzaÂlez-Cossio, F.; Osorio-Arce, M. and GarcõÂa-Betancourt, O., 2000. Comparison of Alpine and Nubian goats for some reproductive traits under dry tropical conditions. Small Ruminant Research. Vol. 36, pp: 91-95.
10
FAO. 2014. Statistical yearbook, Asia and the Pacific Food and Agriculture. Bankok.
11
Gebreyowhens, W. and Kumar, R., 2018. Management and Breeding Objectives of Maefur goat breed type in Erob district eastern Zone of Tigray, Northern Ethiopia. International Journal of Livestock Production. Vol. 9, No. 3, pp: 50-66.
12
Hetherington, L. and Matthews, G., 1992. All about goats. Farming press, kingdom.
13
Hedayat Evrigh, N.; Nourouzi, Z.; Vahedi, V. and Abdi Benemar, H., 2018. Genetic association between the variation of DGAT1 gene and milk production traits in Khalkhali goats. Agriculture and Food. Vol. 6, pp: 188-194.
14
Idele. 2018. Goat production, Meat and milk production. Livestock Institute.
15
Joshi, A.; Kalauni, D. and Bhattarai, N., 2018. Factors Affecting Productive and Reproductive Traits of Indigenous Goats in Nepal. Arch Vet Sci Med. Vol. 1, No. 1, pp: 19-27.
16
Knight, M. and garcia, G. W., 1997. Characteristics of the goat (Capra hircus) and its potential role as a significant milk producer in the tropics: A review. Small Ruminant Research. Vol. 26, pp: 203-215.
17
Kolachhapati, M.R., 2005. Goat nutrition and management for meat production. Green field Journal of Himalayan College of Agricultural Science and Technology (HICAST), Gathaghar, Bhactapur, Nepal. Vol. 5, pp: 82-94.
18
Kolachhapati, M.R., 2006. Phenological study of hill goats under different management systems and nutritional regimes, Ph. D. Thesis. 148 p.
19
Kukovics, S., 2014. Sustainable Goat breeding and goat farming in Central and Eastern European countries. Proceedings of European Regional Conference on Goats. Rome, Italy: Food and Agriculture Organization of the United Nations (FAO). 297 p.
20
Mellado, M.; Valdéz, R.; García, I.E.; López, R. and Rodríguez, A., 2006. Factors affecting the reproductive performance of goats under intensive conditions in a hot arid environment. Small rurninant reseurch. Vol. 63, pp :110-118.
21
Parajuli, A.K.; Kolachhapati, M.R. and Bhattarai, N., 2015. Effect of non genetic factors on reproductive performance of hill goat in Nawalparasi, Nepal. Nepalese Journal of Animal Science. Vol. 2, pp: 29-40.
22
Porter, V. and Tebbit, J., 1996. Goats of the world. Farming Press Miller Freeman Professional Ltd. UK.
23
Pulina, G.; Milán, M.J.; Lavín, M.P.; Theodoridis, A.; Morin, E.; Capote, J.; Thomas, D.L.; Francesconi, A.H.D. and Caja, G., 2018. Current production trends, farm structures, and economics of the dairy sheep and goat sectors. Journal of Dairy Science. Vol. 101, No. 8, pp: 6715-6729.
24
Ruiz Morales, F.A.; Castel Genis, J.M. and Guerrero, Y.M., 2019. Current status, challenges and the way forward for dairy goat production in Europe. Asian-Australas Journal of Animal Science. Vol. 32, pp: 1256-1265.
25
Sharma, S.; Bhattarai, N. and Sapkota, S., 2017. Evaluation of Reproductive Efficiency of Nepalese Hill Goat (Capra hircus L.) in Western Nepal. International Journal of Livestock Research. Vol. 7, pp: 107-116.
26
Shrestha, B.S. and Pokharel, P.K., 2012. Potential and performances of goat breeds and future breeding strategies for commercialization of goat production in Nepal. Proceedings of the national workshop on research and development strategies for goat enterprises in Nepal. pp: 14-22.
27
Tsedeke, K.K., 2007. Production and Marketing System of Sheep and Goat in Alaba, Southern Ethiopia. M.Sc Thesis. Department of Animal and Range Science School of Graduate Studies, Hawassa University, Awassa, Ethiopia.
28
Wilson, R.T. and Durkin, J.W., 1988. Small ruminant production in central Mali: reproductive performance in traditionally managed goats and sheep. Livestock Production Science. Vol. 19, pp: 523-550.
29
Zeder, M.A., 2008. Domestication and early agriculture in the Mediterranean Basin: Origins, diffusion, and impact. Proc Natl Acad Sci USA. Vol. 105, No. 33, pp: 11597-11604.
30
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی نرخ حذف و جایگزینی در دو سیستم مختلف بهینه سازی برای صفات تولیدی و تولیدمثلی و تولیدی و سلامتی در گله های شیری
هدف از انجام این پژوهش بررسی نرخ حذف در دو سیستم مختلف بهینه سازی برای صفات تولیدی وتولید مثلی و تولیدی و سلامتی در گله های شیری، بر مبنای داده های جمع آوری شده از گله های شیری استان اردبیل مطابق با شرایط بازار در یک دوره تولیدی از سال 1396 تا 1397 بود. یکی از مهم ترین تصمیمات مدیریتی موثر بر سود دامداری ها، جایگزینی به موقع گاوشیری با تلیسه جوان می باشد. با استفاده از روش تحلیل سیستم سامانه اقتصادی گله گاو شیری به مولفه های درآمدی و هزینه ای تجزیه شده و هر کدام از این مولفه ها هم به زیر بخش های دیگری تقسیم شدند. سپس با بهره گیری از مدل های ریاضی نسبت به شبیه سازی یک مدل زیست اقتصادی اقدام شد و با استفاده از جعبه ابزار Compecon نرم افزار متلب و مدل برنامه ریزی پویا بهینه سازی سامانه انجام گرفت. گاو شیری توسط متغیرهای وضعیتی شامل توان تولیدی در 3 سطح (کم تولید، متوسط و پر تولید) و عملکرد تولید مثلی با چهار وضعیت (فاصله زایش ایده ال، تاخیر 50، 100 و 150 روز آبستنی) و عملکرد سلامتی در سه وضعیت (عدم بیماری، بیماری قابل درمان، بیماری که سبب حذف غیر ارادی می شود) طبقه بندی و در افق برنامه ریزی با 10 دوره شیردهی مورد بررسی قرارگرفت. نتایج مدل تولیدی و تولیدمثلی نشان داد که در گروه کم تولید، ارزش حال تا شکم چهارم افزایش یافته و سپس روند کاهشی به خود میگیرد. و در گروه متوسط ارزش حال تا شکم دوم افزایش یافته و سپس روند کاهشی به خود می گیرد و در گروه پر تولید بعد شکم اول ارزش حال کاهش می یابد. نتایج مدل تولیدی و سلامتی به لحاظ تغییرات ارزش حال انتظاری مشابه مدل تولیدی و تولیدمثلی بود. ارزش آتی در هر دو سیستم در وضعیت های مختلف تولیدی و تولیدمثلی و تولیدی وسلامتی با افزایش دوره شیردهی و با افزایش سن گاو کاهش یافت. تفاوت ارزش آتی و ارزش کنونی تحت تنزیل 20 درصد نشان داد که با اضافه کردن سطح تولید این تفاوت بیش تر می شود. بدون توجه به ارزش حال وآتی، گاوها زودتر یا دیرتر از موعد بهینه حذف می شوند که این امر منجر به کاهش سود آوری گله می شود. عمر بهینه تعیین شده توسط برنامه ریزی پویا با استفاده از شبیه سازی مارکوف برای مدل تولید و تولید مثل 4/99 سال و برای تولید و سلامتی 4/83 سال حاصل شد. به طوری که حذف گاو شیری با سن بالاتر از سن بهینه تعیین شده منجر به افزایش سودآوری واحدهای دامداری می شود.
http://www.aejournal.ir/article_131719_775b85ba0844119cfcf767c23897faeb.pdf
2021-04-21
71
80
10.22034/aej.2021.131719
برنامه ریزی پویا
عمر بهینه
گاوشیری
نرخ حذف
پیمان
برنج فروش
peyman.3309@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
رضا
سید شریفی
reza_seyedsharifi@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
LEAD_AUTHOR
نعمت
هدایت ایوریق
hedayatuma@gmail.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
جمال
سیف دواتی
jseifdavati@yahoo.com
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
حسین
عبدی بنمار
abdibenemar@uma.ac.ir
5
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
بخشوده، م.؛ سیدصالحی، س.ع. و محبی فانی، م.، 1391. استراتژی جایگزینی بهینه گاوهای شیری با ظرفیت های مختلف تولید شیر در استان فارس. نشریه اقتصاد و توسعه کشاورزی. دوره 26، شماره 3، صفحات 176 تا 182.
1
سیدشریفی، ر.؛ شادپرور، ع. و قوی حسین زاده، ن.، 1392. بررسی سازه های موثر بر عمر بهینه گله گاوهای هلشتاین شمال غرب کشور با استفاده از برنامه ریزی پویای احتمالی. مجله تحقیقات تولیدات دامی. جلد 2، شماره 2، صفحات 19 تا 27.
2
سیدشریفی، ر.؛ موسوی، م.؛ هدایت ایوریق، ن.؛ سیف دواتی، ج. و عبدی بنمار، ح.، 1398. بررسی نرخ حذف بهینه از نظر اقتصادی برای وضعیت های مختلف تولیدی و سلامتی در گاوهای شیری استان اردبیل. نشریه علوم دامی. دوره 32، شماره 124، صفحات 159 تا170.
3
سیدشریفی، ر.؛ طاهرسولا، ه.؛ هدایت ایوریق، ن.؛ سیف دواتی، ج.؛ عبدی بنمار، ح. و بوستان، ا.، 1397. تحلیل اقتصادی گوسفند مغانی در طول چرخه تولید سالانه در دو سیستم مختلف پرورشی. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره ،10 شماره 4، صفحات 99 تا 106.
4
Bell, M.J.; Wall, E.; Russell, G.; Roberts, D.J. and Simm, G., 2010. Risk factors for culling in Holstein-Friesian dairy cows. Veterinary Record. Vol. 167, pp: 238-240.
5
Bertsekas, D.P., 2001. Dynamic Programming and Optimal Control.Vol. 2: Dynamic Programming. 2nd ed. Athena Scientific, Belmont, MA.
6
Brickell, J.S. and Wathes, D.C., 2011.A descriptive study of the survival of Holstein-Friesian heifers through to third calving on English dairy farms. Journal of Dairy Science. Vol.94, pp: 1831-1838.
7
Chiumia, D.; Chagunda, M.G.; Macrae, A.I. and Roberts, D.J., 2013. Predisposing factors for involuntary culling in Holstein–Friesian dairy cows. Journal of Dairy Research. Vol. 80, pp: 45-50.
8
De Vries, A.; Olson, J.D. and Pinedo, P.J., 2010. Reproductive risk factors for culling and productive life in large dairy herds in the eastern United States between 2001 and 2006. Journal of Dairy Science. Vol. 93, pp: 613-623.
9
De Vries, A., 2006. Ranking dairy cows for future profitability and culling decisions. Proceeding 3th Florida & Georgia Dairy Road Show.
10
Kalantari, A.S.; Mehrabani-Yeganeh, H.; Moradi, M.; Sanders, A.H. and De Vries, A., 2010. Determining the optimum replacement policy for Holstein dairy herds in Iran. Journal of Dairy Science. Vol. 93, No. 5, pp: 2262-2270.
11
Kahi, A.K. and Nitter, G., 2004. Developing breeding schemes for pasture based dairy production systems in Kenya I. Derivation of economic values using profit functions, Livest. Prod Sci. Vol. 88, pp: 161-177.
12
Miranda, M.J. and Fackler, P.L., 2002. Applied Computational Economics and Finance. MIT Press, Cambridge, MA.
13
Mohd Nor, N.; Steeneveld, W.; Mourits, M.C.M. and Hogeveen, H., 2012.Estimating the costs of rearing young dairy cattle in the Netherlands using a simulation model tha accounts for uncertainty related to diseases. Preventive Veterinary Medicine. Vol.106, No. 3-4, pp :214-224.
14
Mohd Nor, N.; Stenerld, W. and Hogeveen, H., 2014. The average culling rate of Dutch dariy herds over the years 2007 to 2010 and its association with herd reproduction, performance and health. Journal of Dairy Reserch. Vol. 81, No. 1, pp: 1-8.
15
Olechnowicz., J. and Jaskowski, J.M., 2011. Reasons for culling, culling due to lameness, and economic losses in dairy cows. Medycyna Weterynaryjna. Vol.67, No. 9, pp: 618-621.
16
Pinedo, P.J.; De Vries, A. and Webb, D.W., 2010. Dynamics of culling risk with disposal codes reported by Dairy Herd Improvement dairy herds. Journal of Dairy Science. Vol. 93, No. 5, pp: 2250-2261.
17
Tatar, A.M.; Sireli, D. and Tutkun, M., 2017. Reasons for culling and replacement rate in dairy cattle. Scientific papers. Series D. Animal Science.
18
Van Arendonk, J.A.M., 1985. A model to estimate the performance, revenus and costs of dairy cows under different production and price situations. Agricultural Systems. Vol. 16, pp: 157-189.
19
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی برونتنی امکان استفاده از گیاهان دارویی شامل درمنه کوهی، مریم گلی، بومادران و پونهسای انبوه در جیره دام
گیاهان دارویی فراوانی در ایران هستند که می توانند مورد چرای دام قرار گیرند. با توجه به اطلاعات محدود در زمینه ارزش تغذیه ای برخی از این گیاهان، این مطالعه با هدف بررسی ترکیبات شیمیایی-معدنی، ظرفیت بافری و برخی فراسنجه های هضمی-تخمیری گونه های دارویی شامل درمنه کوهی (Artemisia aucheri Boiss)، مریم گلی (Salvia leriifolia Benth)، بومادران (Achilea santolina) و پونهسای انبوه (Nepeta glomerulosa Boiss) در شرایط برونتنی انجام شد. بیش ترین مقدار الیاف نامحلول در شوینده اسیدی (30/03 درصد)، الیاف نامحلول در شوینده خنثی (46/46 درصد)، لیگنین نامحلول در شوینده اسیدی (16/79 درصد) و فیبر خام (32/87 درصد) مربوط به پونه سای بود (0/05>p ). بیش ترین مقدار پروتئین خام (22/19 درصد) و کربوهیدرات های غیر الیافی (36/96 درصد) در بومادران مشاهده شد (0/05>p ). دامنه کلسیم از بیش ترین مقدار (44/06 گرم در هر کیلوگرم ماده خشک) برای مریم گلی تا کم ترین مقدار برای بومادران (4/39 گرم در هرکیلوگرم ماده خشک) متغیر بود. بومادران (48/04 میلی لیتر) و مریم گلی (39/72 میلی لیتر) به ترتیب بیش ترین مقدار پتانسیل تولید گاز را داشتند. بالاترین میزان قابلیت هضم ماده خشک (60 درصد) در بومادران مشاهده شد (0/05>p ). دامنه انرژی قابل متابولیسم از 4/65 مگاژول در هر کیلوگرم ماده خشک برای درمنه کوهی تا 7/29 مگاژول در هر کیلوگرم ماده خشک برای بومادران متغیر بود. غلظت نیتروژن آمونیاکی محیط کشت (29/62-28/06 میلی گرم در هر دسی لیتر) تحت تأثیر تیمارهای آزمایشی قرار نگرفت. بالاترین pH گیاه (5/98) و ظرفیت بافری اسیدی (212/12 میلیاکیوالان گرم×3-10) به ترتیب در گونه های درمنه کوهی و مریم گلی مشاهده شد (0/05>p ). با توجه به نتایج موجود، بومادران از ارزش تغذیه ای بالاتری برخوردار بود.
http://www.aejournal.ir/article_131811_e8cf3fa7d9f8c7d8599fab96671fe5e9.pdf
2021-04-21
81
92
10.22034/aej.2021.131811
ارزش تغذیهای
دام
گیاه دارویی
منبع علوفهای
محسن
کاظمی
phd1388@gmail.com
1
گروه علوم دامی، مجتمع آموزش عالی تربت جام، تربت جام، ایران
LEAD_AUTHOR
حسن
صالح
hsaleh.um@gmail.com
2
گروه علوم دامی، مجتمع آموزش عالی سراوان، سراوان، ایران
AUTHOR
آقاجانزاده گلشنی، ا.؛ ماهری سیس، ن.؛ سلامت دوست نو، ر.؛ ابراهیم نژاد، ی. و قربانی، ا.، 1399. برآورد ارزش غذایی دانههای گندم و جو با روش تولید گاز آزمایشگاهی با استفاده از دو منبع میکروارگانیسم شیرابه شکمبه و سوسپانسیون مدفوع گوسفند قزل. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 12، شماره 2، صفحات 45 تا 52.
1
شکرانی قشلاق، ن.؛ پایا، ح.؛ تقی زاده، ا. و محمدزاده، ح.، 1399. تعیین ارزش تغذیه ای ضایعات چای سبز و سیاه در تغذیه نشخوارکنندگان با استفاده از روش آزمایشگاهی تولید گاز. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 12، شماره 2، صفحات 53 تا 60.
2
Allen, V.G. and Segarra, E., 2001. Anti-quality components in forage: overview, significance, and economic impact. Journal of Range Management. Vol. 54, No. 4, pp: 409-412.
3
Al-Snafi, A.E., 2013. Chemical constituents and pharmacological activities of milfoil (Achillea santolina). A review. International Journal of PharmTech Research. Vol. 5, No. 3, pp: 1373-1377.
4
ANKOM Technology. 2005. Method for determining acid detergent lignin in Beakers method 8.
5
ANKOM Technology. 2006a. Acid detergent fibre in feeds-filter bag technique method 12.
6
ANKOM Technology. 2006b. Neutral detergent fiber in feeds-filter bag technique method 6.
7
AOAC. 1990. Official Methods of Analysis. 15th Edition. Association of Official Analytical Chemists. Arlington, Virginia, USA.
8
AOAC. 1999. Official Methods of Analysis. 16th Edition. Association of Official Analytical Chemists, Washington, DC, USA.
9
Arelovich, H.M.; Abney, C.S.; Vizcarra, J.A. and Galyean, M.L., 2008. Effects of dietary neutral detergent fiber on intakes of dry matter and net energy by dairy and beef cattle: Analysis of published data. The Professional Animal Scientist. Vol. 24, No. 5, pp: 375-383.
10
Armentano, L.E., 1992. Ruminant hepatic metabolism of volatile fatty acids, lactate and pyruvate. Conference in hepatic metabolism of organic acids, American Institute of Nutrition. Vol. 122, pp: 838-842.
11
Arshadullah, M.; Anwar, M. and Azim, A., 2009. Evaluation of various exotic grasses in semi-arid conditions of Pabbi Hills, Kharian Range. The Journal of Animal and Plant Sciences. Vol. 19, No 2, pp: 85-89.
12
Arzani, H. and Naseri, K.L., 2009. Livestock feeding on pasture (Translated). 2th Edition. University of Tehran press, Iran. 299 p.
13
Arzani, H.; Basiri, M.; Khatibi, F. and Ghorbani, G., 2006. Nutritive value of some Zagros mountain rangeland species. Small Ruminant Research. Vol. 65, pp: 128-135.
14
Belyea, R.; Restrepo, R.; Martz, F. and Ellersieck, M., 1999. Effect of year and cutting on equations for estimating net energy of alfalfa forage. Journal of Dairy Science. Vol. 82, pp: 1943-1949.
15
Bodas, R.; Lopez, S.; Fernandez, M.; Garcia-Gonzalez, R.; Rodriguez, A.B.; Wallace, R.J. and Gonzalez, J.S., 2008. In vitro screening of the potential numerous plant species as antimethanogenic feed additives for ruminants. Animal Feed Science and Technology. Vol. 145, pp: 245-258.
16
Broudiscou, L.P.; Papon, Y. and Broudiscou, A.F., 2000. Effects of dry plant extracts on fermentation and methanogenesis in continuous culture of rumen microbes. Animal Feed Science and Technology. Vol. 87, pp: 263-277.
17
Bujnak, L.; Maskalova, I. and Vajda, V., 2011. Determination of buffering capacity of selected fermented feedstuffs and the effect of dietary acid-base status on ruminal fluid pH. Acta Veterinaria Brno. Vol. 80, pp: 269-273.
18
Calsamiglia, S.; Busquet, M.; Cardozo, P.W.; Castillejos, L. and Ferret, A., 2007. Invited review: essential oils as modifiers of rumen microbial fermentation. Journal of Dairy Science. Vol. 90, pp: 2580-2595.
19
Canbolat, O.; Kamalak, A.; Ozkan, C.O.; Erol, A.; Sahin, M.; Karakas, E. and Ozkose, E., 2006. Prediction of relative feed value of alfalfa hays harvested at different maturity stages using in vitro gas production. Livestock Research for Rural Development. Vol. 18, No. 2.
20
Cardozo, P.W.; Calsamiglia, S.; Ferret, A. and Kamel, C., 2004. Effects of natural plant extracts on ruminal protein degradation and fermentation profiles in continuous culture. Journal of Animal Science. Vol. 82, pp: 2336-3230.
21
Castillejos, L.; Calsamiglia, S.; Ferret, A. and Losa, R., 2005. Effects of a specific blend of essential oil compounds and the type of diet of rumen microbial fermentation and nutrient flow from continuous culture systems. Animal Feed Science and Technology. Vol. 119, pp: 29-41.
22
Cobellis, G.; Trabalza-Marinucci, M. and Zhongtang, Y., 2016. Critical evaluation of essential oils as rumen modifiers in ruminant nutrition: A review. Science of the Total Environment. Vol. 545-546, pp: 556-568.
23
Darwish, A.S.A., 2014. Essential oil variation and trace metals content in garden sage (Salvia officinalis L.) grown at different environmental conditions. Journal of Agricultural Science. Vol. 6, No. 3, pp: 209-214.
24
Garcia-Gonzalez, R.; Lopez, S.; Fernandez, M.; Bodas, R. and Gonzalez, J.S., 2004. Screening the activity of medicinal plants and spices for decreasing ruminal methane production in vitro. Animal Feed Science and Technology. Vol. 147, No. 1-3, pp: 36-52.
25
Getachew, G.; Makkar, H.P. and Becker, K., 2000. Effect of polyethylene glycol on in vitro degradability of nitrogen and microbial protein synthesis from tannin-rich browse and herbaceous legumes. British Journal of Nutrition. Vol. 84, pp: 73-83.
26
Gezek, G.; Hashemi, P.; Kalaycıoglu, Z.; Kaygusuza, H.; Sarıoglua, G.; Doker, S.; Dirmenci, T. and Bedia Erim, F., 2019. Evaluation of some Turkish Salvia species by principal component analysis based on their vitamin B2, mineral composition, and antioxidant properties. LWT-Food Science and Technology. Vol. 100, pp: 287-293.
27
Hashemi, P.; Abolghasemi, M.; Fakhari, A.; Ebrahimi, S. and Ahmadi, S., 2007. Hydrodistillation-solvent micro extraction and GC-MS identification of volatile components of Artemisia aucheri. Chromatographia. Vol. 66, pp: 283-286.
28
Hu, W.; Wu, Y.; Liu, J.; Guo, Y. and Ye, W., 2005. Tea saponins affect in vitro fermentation and methanogenesis in faunated and defaunated rumen fluid. Journal of Zhejiang University Science B. Vol. 6, pp: 787-792.
29
Isselstein, J. and Daniel, P., 1996. The ensilability of grassland forbs: proceedings of the 16th general Meeting of the European Grassland Federation. Grado, Italy, pp: 451-455.
30
Jasaitis, D.K.; Wohlt, J.E. and Evans, J.L., 1987. Influence of feed ion content on buffering capacity of ruminant feedstuffs in vitro. Journal of Dairy Science. Vol. 70, pp: 1391-1403.
31
Javidnia, K.; Miri, R.; Kamalinejad, M. and Nasiri, A. 2002. Composition of essential oil of Salvia mirzayanii from Iran. Flavour and Fragrance Journal. Vol. 17, pp: 465-467.
32
Karafakıoglu, Y.S. and Aksoy, L., 2019. Evaluation of Minerals, phenolics, radical scavenging activity, total oxidant status and total antioxidant status of Nepeta viscida Boiss. International Journal of Agriculture, Forestry and Life Science. Vol. 3, No 1, pp: 98-105.
33
Kazemi, M., 2019. Comparing mineral and chemical compounds, in vitro gas production and fermentation parameters of some range species in Torbat-e Jam, Iran. Journal of Rangeland Science Vol. 9, No. 4, pp: 351-363.
34
Kazemi, M. and Valizadeh, R. 2019a. Nutritional potential of four plant species (Arctium lappa, Verbascum thapsus, Althaea officinalis and Ferula hermonis) in Razavi Khorasan rangelands. Iranian Journal of Range and Desert Research. Vol. 26, No. 3, pp: 351-360.
35
Kazemi, M. and Valizadeh, R., 2019b. Nutritive value of some rangeland plants compared to medicago sativa. Journal of Rangeland Science. Vol. 9, No 2, pp: 136-150.
36
Khamis Abadi, H.; Kafilzadeh, F. and Gharaien, B., 2016. Effect of thyme (Thymus vulgaris) or peppermint (Mentha piperita) on performance, digestibility and blood metabolites of fattening Sanjabi lambs. Biharean Biologist. Vol. 10, No. 2, pp: 118-122.
37
Kokdil, G. and Kurucu, S., 1997. Chemical Constituents of the Essential Oils of Nepeta italica L. and Nepeta sulfuriflora P. H. Davis. Flavour and Fragrance Journal. Vol. 12, pp: 33-35.
38
Komolong, M.K.; Barber, D.G. and McNeill, D.M., 2001. Post-ruminal protein supply and N retention of weaner sheep fed on a basal diet of lucerne hay (Medicago sativa) with increasing levels of quebracho tannins. Animal Feed Science and Technology. Vol. 92, No. 1-2, pp: 59-72.
39
Krishnamoorthy, U.; Rymer, C. and Robinson, P.H., 2005. The in vitro gas production technique: Limitations and opportunities. Animal Feed Science and Technology. Vol. 123-124, No. 1, pp: 1-7.
40
Kucukbay, F.Z. and Cetin, H., 2012. Determination of some essential elements and composition of the essential oils of Achillea grandifolia Friv. (Asteraceae) from different localities. Analytical Chemistry Letters. Vol. 2, No. 6, pp: 337-350.
41
Kurmanbayeva, A.; Shynykul, Z.; Ye, Y.; Dyusebaeva, M.A. and Jenis, J., 2018. Chemical constituents of Artemisia sublessingiana. International Journal of Biology and Chemistry. Vol. 11, No. 2, pp: 117-123.
42
Larbi, A.; Khatib-Salkin, A.; Jammal, B. and Hassan, S., 2011. Seed and forage yield, and forage quality determinants of nine legume shrubs in a non-tropical dryland environment. Animal Feed Science and Technology. Vol. 163, No. 2, pp: 214-221.
43
Levic, J.; Prodanovic, O. and Sredanovic, S., 2005. Understending the buffering capacity in feedstuffs. Biotechnology in Animal Husbandry. Vol. 21, No. 5-6, pp: 305-313.
44
Mahboubi, M. and Ghazian Bidgoli, F., 2007. Biological activity of essential oil from aerial parts of Artemisia aucheri Boiss. from Iran. Herba Polonica. Vol. 55, No. 4, pp: 96-104.
45
Makkar, H.P.S., 2005. In vitro gas methods for evaluation of feeds containing phytochemicals. Animal Feed Science and Technology. Vol. 123-124, pp: 291-302.
46
Mauricio, R.M.; Owen, E.; Mould, F.L.; Givens, I.; Theodorou, M.K.; France, J.; Davies, D.R. and Dhanoa, M.S., 2001. Comparison of bovine rumen liquor and bovine faeces as inoculum for an in vitro gas production technique for evaluating forages. Animal Feed Science and Technology. Vol. 89, pp: 33-48.
47
Menke, K.H. and Steingass, H., 1988. Estimation of the energetic feed value obtained from chemical analysis and in vitro gas production using rumen fluid. Animal Research Development. Vol. 28, pp: 7-55.
48
Mitic, M.; Tosic, S.; Pavlovic, A.; Maskovic, P.; Kostic, D.; Mitic, J. and Stevanovic, V., 2019. Optimization of the extraction process of minerals from Salvia officinalis L. using factorial design methodology. Microchemical Journal. Vol. 145, pp: 1224-1230.
49
Moharrery, A., 2007. The determination of buffering capacity of some ruminant’s feedstuffs and their cumulative effects on TMR ration. American Journal of Animal and Veterinary Sciences. Vol. 2, No. 4, pp: 72-78.
50
Montanez-Valdez, O.D.; Solano-Gama, J.D.J.; Martinez Tinajero, J.J.; Guerra-Medina, C.E.; Coss, A.L.D. and Orozco-Hernandez, R., 2013. Buffering capacity of common feedstuffs used in ruminant diets. Revista Colombiana de Ciencias Pecuarias. Vol. 26, pp: 37-41.
51
Mozaffarian, V., 1996. Plants of Iran. Farhang-e Moaser Publishers. Tehran, Iran.
52
Nasirpour, M.; Yavarmanesh, M.; Mohhamadi Sani, A.; Nasirpour, M. and Mohamdzade Moghadam, M., 2014. Antibacterial effect of aqueous extract of Artemisia aucheri, Artemisia sieberi and Hyssopus officinalis L. on the food borne pathogenic bacteria. Food Science and Technology. Vol. 12, No. 46, pp: 73-84.
53
Norman, H.C.; Revell, D.K.; Mayberry, D.E.; Rintoul, A.J.; Wilmot, M.G. and Masters, D.G., 2010. Comparison of in vivo organic matter digestion of native Australian shrubs by sheep to in vitro and in sacco predictions. Small Ruminant Research. Vol. 91, pp: 69-80.
54
NRC. 2007. Nutrient requirements of small ruminants: Sheep, goats, cervids, and new world camelids (6th Edition). Washington: National Academy Press, Washington, D.C., USA. 384 p.
55
Ørskov, E.R. and McDonald, I., 1979. The estimation of protein degradability in the rumen from incubation measurements weighted according to rate of passage. Journal of Agricultural Science. Vol. 92, pp: 499-503.
56
Owensby, C.E.; Ham, J.; Knapp, A. and Auen, L., 1999. Biomass production and species composition change in a tallgrass prairie ecosystem after long-term exposure to elevated atmospheric CO2. Global Change Biology. Vol. 5, No. 5, pp: 497-506.
57
Patra, A.K.; Kamra, D.N. and Agarwal, N., 2006. Effect of spices on rumen fermentation, methanogenesis and protozoa counts in in vitro gas production test. International Congress Series. Vol. 1293, pp: 176-179.
58
Pearson, R.A.; Archibald, R.F. and Muirhead, R.H., 2006. A comparison of the effect of forage type and level of feeding on the digestibility and gastrointestinal mean retention time of dry forage given to cattle, sheep, ponies and donkeys. British Journal of Nutrition. Vol. 95, pp: 88-98.
59
Peiretti, P.G. and Gai, F., 2009. Fatty acid and nutritive quality of chia (Salvia hispanica L.) seeds and plant during growth. Animal Feed Science and Technology. Vol. 148, pp: 267-275.
60
Raghuvansi, S.K.S.; Prasad, R.; Mishra, A.S.; Chaturvedi, O.H.; Tripathi, M.K.; Misra, A.K.; Saraswat, B.L. and Jakhmola, R.C., 2007. Efect of inclusion of tree leaves in feed on nutrient utilization and rumen fermentation in sheep. Bioresource Technology. Vol. 98, pp: 511-517.
61
Rechinger, K.H., 1982. Flora Iranica. Akademische Druck U. Verlagsanstalt: Graz Austria. Vol. 150, pp: 479.
62
Revell, D.K. and Sweeney, G., 2004. Aligning profitable grazing systems with reduced water recharge in southern Australia; matching plants, animal grazing behaviour and the environment in mixed forage systems. In: Ridley, A.; Feikema, P.; Bennet, S.; Rogers, M.J.; Wilkinson, R. and Hirth, J., (Eds.), Proceedings of the Conference ‘Salinity Solutions: Working with Science and Society’. Bendigo, Australia (cooperative research centre for plant-based management of dryland salinity) CD ROM.
63
Safari, J.; Mushi, D.; Kifaro, G.; Mtenga, L. and Eik, L., 2011. Seasonal variation in chemical composition of native forages, grazing behaviour and some blood metabolites of small East African goats in a semi-arid area of Tanzania. Animal Feed Science and Technology. Vol. 164, No. 1, pp: 62-70.
64
Sanson, D.W. and Kercher, C.J., 1996. Validation of equations used to estimate relative feed value of Alfalfa hay. The Professional Animal Scientist. Vol. 12, pp: 162-166.
65
SAS Institute INC. 2002. Sas user’s Guide: statistics. Statistical Analysis Systems Institute Inc. Cary NC.
66
Seymour, W.M.; Campbell, D.R. and Johnson, Z.B., 2005. Relationships between rumen volatile fatty acid concentrations and milk production in dairy cows: a literature study. Animal Feed Science and Technology. Vol. 119, pp: 155-169.
67
Shen, Y.Z.; Ran, T.; Saleem, A.M.; Wang, H.R. and Yang, W.Z., 2019. Short communication: Ground corn steeped in citric acid modulates in vitro gas production kinetics, fermentation patterns and dry matter digestibility. Animal Feed Science and Technology. Vol. 247, pp: 9-14.
68
Sivropoulou, A., Nikolaou, C., Papanikolaou, E., Kokkini, S., Lanaras, T. and Arsenakis, M.J., 1997. Antimicrobial, cytotoxic, and antiviral activities of Salvia fructicosa essential oil. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol.45, No. 8, pp: 3197-3201.
69
Sniffen, C.J.; O’Connor, J.D.; Van Soest, P.J.; Fox, D.G. and Russell, J.B., 1992. A net carbohydrate and protein system for evaluating cattle diets. II. Carbohydrate and protein availability. Journal of Animal Science. Vol. 70, No 11, pp: 3562-3577.
70
Soliva, C.R.; Zeleke, A.B.; Clement, C.; Hess, H.D.; Fievez, V. and Kreuzer, M., 2008. In vitro screening of various tropical foliages, seeds, fruits and medicinal plants for low methane and high ammonia generating potentials in the rumen. Animal Feed Scienve and Technology. Vol. 147, pp: 53-71.
71
Theodorou, M.K.; Williams, B.A.; Dhanoa, M.S.; McAllan, A.B. and France, J., 1994. A simple gas production method using a pressure transducer to determine the fermentation kinetics of ruminant feeds. Animal Feed Science and Technology. Vol. 48, pp: 185-197.
72
Van Soest, P.J., 1982. Nutritional Ecology of the Ruminant. O & B Books Inc., Corvallis, Oregon, USA. 252 p.
73
Vencelova, M.; Varadyova, K.; Mihalikova, D.; Jalc, D. and Kisidayova, S., 2014. Effects of selected medicinal plants on rumen fermentation in a high-concentrate diet in vitro. The Journal of Animal and Plant Sciences. Vol. 24, No. 5, pp: 1388-1395.
74
Waghorn, G.C., 2003. Consequences of plant phenolic compounds for productivity and health of ruminants. Proceedings of the Nutrition Society. Vol. 62, pp: 383-392.
75
Weiss, W.P., 2002. Relative Feed Value of Forages and Dairy Cows: A Critical Appraisal. Proceedings Tri-State Dairy Nutrition Conference, Grand Wayne Center Fort Wayne, April 16 and 17, Indiana. pp: 127-140.
76
Wina, E.; Muetzel, S.; Hoffmann, E.M. and Becker, K., 2004. Effects of saponin-containing methanol extract of Sapindus rarak on ruminal flora and fermentation characteristics in vivo. Reproduction Nutrition and Development. Vol. 44, pp: S41.
77
Xue, Y.L.; Yin, G.M.; Zhao, H.P.; Bai, C.S.; Sun, J.J.; Yu, Z. and Sun, Q.Z., 2016. Nutritive value of desert wormwood (Artemisia desertorum Spreng.) silage in mixture with high moisture maize straw. Grass and Forage Science. Vol. 72, No. 1, pp: 174-178.
78
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر پرایمینگ و تلقیح با قارچ گلوموس اینترارادیسز و گلوموس موسه بر ترکیب شیمیایی، فراسنجه های تولید گاز و قابلیت هضم برونتنی علوفه عدس
مطالعه ای به منظور تأثیر هورمونهای گیاهی به صورت پرایمینگ و تلقیح با کودهای زیستی بر ترکیب شیمیایی و فراسنجه های تخمیری علوفه عدس در شرایط برونتنی انجام شد. در ابتدا بذور عدس قبل از اعمال تیمارهای پرایمینگ، با محلول دو درصد هیپوکلریت سدیم ضد عفونی و قبل از کشت به مدت 8 ساعت در محلول های مورد نظر (هورمون سالیسیلیک اسید و جیبرلیک اسید و آب مقطر) نگه داری شدند. تیمارهای آزمایشی شامل: عامل اول استفاده از قارچهای میکوریزی در سه سطح [عدم تلقیح (شاهد)، تلقیح خاک با گونه های قارچ میکوریزای Glomus intraradices و G. mosseae]. عامل دوم شامل تیمارهای پرایمینگ در 5 سطح [هیدروپرایم (با استفاده از آب مقطر)، پرایمینگ با اسید جیبرلیک 100 پی پی ام، پرایمینگ با اسید سالیسیلیک 100 پی پی ام، پرایمینگ با اسید جیبرلیک 100 پی پی ام × پرایمینگ با اسید سالیسیلیک 100 پی پی ام و شاهد (بدون تیمار)] بود. . ترکیب شیمیایی نمونه ها با استفاده از روش های استاندارد تعیین شد. به منظور برآورد فراسنجه های تولید گاز، از آزمون تولید گاز استفاده شد. قابلیت هضم برونتنی نمونه ها با استفاده از روش کشت بسته تعیین شد. نتایج نشان داد که بین تیمارهای آزمایشی از نظر ماده خشک، پروتئین خام، الیاف نامحلول در شوینده خنثی، الیاف نامحلول در شوینده اسیدی و خاکستر خام اختلاف معنی داری وجود داشت (0/05>p ). در شرایط عدم کاربرد قارچ، تیمار تلفیق دو هورمون بیش ترین و تیمار اسید سالیسیلیک و اسید جیبرلینگ کم ترین پروتئین خام را داشتند. در این مطالعه تیمار گلوموس اینترارادیسز تیمار قارچ گلوموس اینترارادیسیز×اسیدسالیسیلیک کم ترین میزان الیاف نامحلول در شوینده خنثی و الیاف نامحلول در شوینده اسیدی را داشتند. پیش تیمار کردن بذر عدس با اسید سالیسیلیک و تلفیق دو هورمون در شرایط دیم، موجب افزایش پروتئین، الیاف نامحلول در شوینده خنثی و مواد مغذی قابل هضم در مقایسه با کاربرد قارچ گلوموس اینترارادیسیز و گلوموس موسه شد. تیمار قارچ گلوموس موسه بالاترین میزان پتانسیل تولید گاز (294/9 میلی لیتر) و قارچ گلوموس موسه×اسید جیبرلیک بالاترین انرژی قابل متابولیسم (13/48 مگا ژول در کیلوگرم) را در مقایسه با سایر تیمارها داشتند. به طورکلی نتایج این مطالعه نشان داد که تیمار کردن بذر محصولات زراعی با اهداف مقاوم کردن در برابر بیماری ها و آفات و تنش هایی از قبیل شوری و خشکی، توانا ساختن ریشه ها در جذب آب و مواد مغذی می تواند بر ارزش تغذیه ای علوفه حاصل از آن ها تاثیر داشته باشد.
http://www.aejournal.ir/article_132890_343872cc2a04ff4149b44955598121da.pdf
2021-04-21
93
102
10.22034/aej.2021.132890
بذر
حبوبات
تلقیح میکوریزی
ترکیب شیمیایی
تولید گاز
جواد
بیات کوهسار
javad_bayat@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
LEAD_AUTHOR
فرشته
مقصودلو
fmaghsoudoo@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
محسن
آذرنیا
azarnia@yahoo.com
3
گروه علوم زراعی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
فرزاد
قنبری
farzadghanbari@yahoo.com
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
فرخنده
رضایی
farkhondehrezaii@yahoo.com
5
بخش کشاورزی، دانشگاه پیام نور، ایران
AUTHOR
باژیان، غ.، 1386. مروری بر مدیریت مراتع جامعه عشایری در گذشته و حال: تغییرات، چالش ها و راهکارها. فصلنامة علمی-پژوهشی تحقیقات مرتع و بیابان ایران. جلد 14، شماره 4، صفحات 524 تا 538.
1
پارسا، م. و باقری، ع.، 1392. حبوبات. انتشارات جهاد دانشگاهی مشهد. 522 صفحه.
2
صمدی، ص.؛ قاسم نژاد، ع. و علیزاده، م.، 1393. تغییرات فعالیت آنزیم فنیل آلانین آمونیالیاز (PAL) کنگرفرنگی (Cynara scolymus L) تحت تأثیر متیل جاسمونات و اسید سالیسیلیک در شرایط درون شیشه ای. نشریه پژوهش های تولید گیاهی. جلد 21، شماره 4، صفحات 135 تا 148.
3
Aberg, B., 1981. Plant growth regulators XLI. Monosubstituted benzoic acid. Swed. Journal of Agriculture science. Vol. 11, pp: 93-105.
4
Anandhi, S. and Ramanujam, M.P., 1997. Effect of salicylic acid on black gram (Vigna mungo) cultivars. Indian Journal of Plant Physiology. Vol. 2, pp: 138-141.
5
AOAC. 2003. Official Methods of Analysis. 15th edn. Association of Official Analytical Chemists, Washington, DC. USA.
6
Bamdad, F.; Dokhani, S. and. Keramat, J., 2009. Functional assessment and subunit constitution of lentil (Lens culinaris) proteins during germination. International Journal of Agriculture and Biology. Vol. 11, No. 6, pp: 690-694.
7
Blummel, M.l.; Makkar, H.P.S. and Becker, K., 1997. In vitro gas production: a technique revisited. Journal of Animal, Physiology and Animal Nutrition. Vol. 77, pp: 34-24.
8
Deshpande, S.S., 2002. Handbook of food toxicology. Toxicants and antinutrient in plant foods. Marcel Dekkel, New York. Endogenous plant hormones in hexaploid wheat plant under salt stress? Journal of Integrative Plant Biology. Vol. 48, No.2, pp: 181-189.
9
FAO. 2013. FAO Year Book. FAO Publication, (http://faostat.fao.org/site/).
10
Getachew, G.; Depiters, E.J. and Robinson, P.H. 2002. In vitro gas production provides effective method for assessing ruminant feeds. California Agriculther. Vol. 58, pp: 54-58.
11
Grusak, M.A., 2009. Nutritional and health-benecial quality. In: Erskine, W.; Muehlbauer, F.J.; Sarker, A. and Sharma, B., (ed), The Lentil: Botany, Production and Uses. Wallingford: CABI, 368390.
12
Hamid, H.; Rehman, K. and Ashraf, Y., 2010. Salicylic acid–induced growth and biochemical changes in salt-stressed wheat. Communications in Soil Science and Plant Analysis. Vol. 41, pp: 373-389.
13
Hassanein, R.A.; Abdelkader, A.F.H.; El-Said Amin, A. and El-Sherbiny, M.R., 2012. Grain-priming and foliar pretreatment enhanced stress defense in wheat (Triticum aestivum var. Gimaza 9) plants cultivated in drought land. AJCS Search Results Web results. Australian Journal of Crop Science. Vol. 6, No. 1, pp: 121-129.
14
Iqbal, M.; Ashraf, M.; Jamil, A. Ur-Rehman, S., 2006. Does seed priming induce changes in the levels of some endogenous plant hormones in hexaploid wheat plants under salt stress? Journal of Integrative Plant Biology. Vol. 48, pp: 181-189.
15
Johari-Pireivatlou, M., 2010. Effect of Soil Water Stress on Yield and Proline Content of Four Wheat Lines. African journal of biotechnology. Vol. 9, No. 1, pp: 036-040.
16
Kaur, S.; Gupta, A.K. and Kaur, N., 2005. Seed priming Increases Crop yield possibly by Modulating enzymes of Sucrose metabolism in chickpea. Journal. Agronomy and Crop Science. Vol. 191, pp: 81-87.
17
Khandelwal, S.; Udipi, S.A. and Ghuger, P., 2009. Polyphenols and tannins in Indian pulses: Effect of soaking, germination and pressure cooking. Food Research International. Vol. 43, pp: 526-530.
18
Kovacik, J.; Backor, M.; Strnad, M. and Repcak, M., 2009. Salicylic acid-induced changes to growth and phenolic metabolism in Matricaria chamomilla plants. Plant Cell Reports. Vol. 28, pp:135-143.
19
Kung, L.; Stokes, M.R. and Lin, C.J., 2004. Silage additives. pp: 305-360 in Silage Science and Technology (Agronomy Series No. 42). Buxton, D.R.; Muck, R.E. and Harrison, H.J., ed. American Society of Agronomy, Madison, WI.
20
Lee, H.; León, J. and Raskin, I., 1995. Biosynthesis and metabolism of salicylic acid. Proceedings of the National Academy of Sciences.Vol. 92, pp: 4076-4079.
21
Makkar, H.P.S., 2005. In vitro gas methods for evaluation of feeds containing phytochemicals. Animal feed science and techmology. Vol. 123, pp: 291-302.
22
Malick, C.P. and Singh, M.B., 1980. In plant enzymology and histo enzymologhy Kalyani Publishers New Dehli 1980. 286 p.
23
McSweeney, C.S.; Palmer, B.D.; McNeill, M. and Krause, D.O., 2001. Microbial interactions with tannins: nutritional consequences for ruminants. Animal feed science and techmology. Vol. 91, pp: 83-93.
24
Menke, K.H. and Steingass, H.H., 1988. Estimation of the energetic feed value obtained from chemical analysis and in vitro gas production using rumen fluid. Journal of Animal Research Developent. Vol. 28, pp: 7-55.
25
Menke, K.H.; Raab, L.; Solewski, A.; Steingass, H.; Fritz, D. and Schneider, W., 1979. The estimation of the digestibility and metabolisable energy content of ruminant feeding stuffs from the gas production when they are incubated with rumen liquor in vitro. Journal of Agriculture science. Vol. 93, pp: 217-222.
26
Norton, B.W., 1998. The nutritive value of tree legumes. In: Gutteridge, R.C. and Shelton, H.M., (Eds.), Forage Tree Legumes in Tropical Agriculture. Tropical Grassland Society of Australia Inc., Queensland, Australia.
27
O’Hara, M. and Ohki, K., 1973. Studies of the mode of gas production in an artificial rumen and its application to the evaluation of feedstuffs. III. The mode of volatile fatty acid production, and its relation to the gas production rate. Jpn. Journal of Zootech Science. Vol. 44, pp: 432-439.
28
Olivera, M.P., 1998. Use of in vitro gas production technique to assess the contribution of both soluble and insoluble fraction on the nutritive value of forage. A thesis submitted to the University of Aberdeen, Scotland, in partial fulfillment of the degree of Master of Science in Animal Nutrition.
29
Ørskov, E.R. and McDonald, I., 1979. The estimation of protein degradability in the rumen from incubation measurements weighted according to rate of passage. Journal of Agriculture Science. Vol. 92, pp: 499-503.
30
Raskin, I., 1992. Role of salicylic acid in plants. Annual Review of Plant Physiology and Plant Molecular Biology. Vol. 43, pp: 439-463.
31
Rawel, H.M.; Rohn, S. and Kroll, J., 2003. Influence of a sugar moiety (rhamnosyl glucoside) at 3-O- position on the reactivity of quercetin with whey proteins. International Journal of Biological Macromolecules. Vol. 32, pp: 109-120.
32
SAS. 2000. SAS User’s Guide: Statistics, Version 9.1 Edition. SAS Institute, Cary, NC, USA.
33
Scalbert, A., 1991. Antimicrobial properties of tannins. Hytochemistry. Vol. 30, pp: 3875-3883.
34
Singh, C.K.; Robinson, P.H. and McNiven, M.A., 1995. Evaluation of raw and roasted lupin seeds as protein supplements for lactating cows. Animal feed science and techmology. Vol. 52, No. 1, pp: 73-76.
35
Theodorou, M.K.; Williams, B.A.; Dhanoa, M.S.; McAllan, A.B. and France, J., 1994. A simple gas production method using a pressure transducer to determine the fermentation kinetics of ruminant feeds. Animal feed science and techmology. Vol. 48, pp: 185-197.
36
Valentin, S.F.; Williams, P.E.V.; Forbes, J.M. and Sauvant, D., 1999. Comparison of the in vitro gas production technique and the nylon bag degradability technique to measure short and long term processes of degradation of maize silage in dairy cows. Animal feed science and techmology. Vol. 78, pp: 81-99.
37
Van Soest, P.J., 1994. Nutritional Ecology of the Ruminant, 2nd ed.; Cornell University Press: United States.
38
Van Soest, P.J.; Robertson, J.B. and Lewis, B.A., 1991. Methods for dietary fiber neutral detergent fiber and non-starch polysaccharides in relation to animal nutrition. Journal of Dairy Science. Vol. 74, pp: 3583-3597.
39
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر امواج الکترومغناطیسی موبایل بر هورمون رشد در موش صحرایی
در زندگی مدرن امروز کاربرد تلفن های همراه بسیار قابل توجه است. هورمون رشد هورمونی است که از بخش پیشین هیپوفیز یا آدنوهیپوفیز آزاد می شود. هدف از این مطالعه بررسی اثر امواج ناشی از تلفن همراه بر میزان هورمون رشد می باشد. در این مطالعه 35 سر موش صحرایی نر بالغ نژاد ویستار به صورت تصادفی به 5 گروه تقسیم شدند که هر گروه شامل 7 موش صحرایی می باشد. گروه شاهد که به مدت 7 روز هیچ امواجی دریافت نکردند. گروه شم 1 و 2 که به مدت 7 روز هر روز 3 و 6 ساعت در معرض موبایل روشن (بدون مکالمه) بودند . گروه تجربی 1 و 2 که به ترتیب برای مدت 3 و 6 ساعت به مدت 7 روز در معرض امواج موبایل (در حال مکالمه) قرار داشتند. سپس نمونه سرم حیوانات، جمع آوری و هورمون رشد با روش الیزا اندازه گیری شد. داده ها با استفاده از نرم افزار آماری SPSS و تست one way ANOVA آنالیز شدند. نتایج نشان داد که دو گروه تجربی 1 و 2 کاهش معنی داری در میانگین غلظت هورمون رشد با گروه های شاهد و دو گروه شم 1 و 2 داشته است. هم چنین کاهش هورمون رشد در گروه تجربی 2 نسبت به گروه تجربی 1 نیز معنی دار بوده است. گروه شم 2 نیز نسبت به گروه شاهد کاهش معنی داری داشته است. نتایج بیانگر کاهش معنی دار میزان هورمون رشد در گروه های تحت تاثیر امواج حاصل از گوشی همراه می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_132896_8fa5c84d34cfd3c033caf48d59e47e79.pdf
2021-04-21
103
108
10.22034/aej.2021.132896
هورمون رشد
امواج
موبایل
موش صحرایی
خاطره
صفوی نایینی
safavi@iaua.ac.ir
1
گروه فارماکولوژی، واحد ارسنجان، دانشکده داروسازی، دانشگاه آزاد اسلامی، ارسنجان، ایران
LEAD_AUTHOR
مریم
قربانی
2
بیمارستان فجر، دانشگاه علوم پزشکی ارتش ، تهران ، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، ز. و صفوی نایینی، خ.، 1397. بررسی اثر اموااج الکترومغناطیسی موبایل بر هورمون پرولاکتین در موش صحرایی. فصلنامه زیست جانوری دامغان. سال 11، شماره 1، صفحات 46 تا 55.
1
2. بهارآرا، ج.؛ پریور، ک.؛ اشرف، ع. و عزیزی، م.، 1388. اثر امواج تلفن های همراه بر سیستم خون ساز موش نر نابالغ نژاد BALB/c. فصلنامه فیض دوره 13، شماره 2، صفحات 75 تا 81.
2
3. حسینی، ا.، 1385. فیزیولوژی اعصاب و غدد درون ریز. انتشارات راهگشا. صفحات 30 تا 150.
3
4. حمایت خواه جهرمی، و.؛ فتاحی، ا.؛ نظری، م.؛ جوهری، ح. و کارگر، ح.، 1389. بررسی اثر امواج موبایل بر تعداد فولیکول های تخمدان و میزان هورمون های FSH ، LH ، استروژن و پروژسترون در موش های صحرایی بالغ. سلول و بافت. دوره 1، شماره 1، صفحات 27 تا 34.
4
5. رضائی زاده، ر. و کرد، م.، 1390. بررسی اثر امواج مایکروویو حاصل از موبایل بر سطح هورمون های تیروئیدی، کورتیزول و پاراتورمون سرم موش صحرایی ماده بالغ و نابالغ. پایان نامه کارشناسی ارشد رشته فیزیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز. صفحات 1 تا 30.
5
6. صادقی، ع.؛ پورمظفر، س. و گذری، م.، 1399. تاثیر داروی لیورگل بر شاخص های رشد و تکامل گنادی در سطوح مختلف چربی جیره ماهی قرمز (Carassius auratus). فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 12، شماره 1، صفحات 323 تا 330.
6
7. قیطاس پور، ف.؛ متین فر، ع. و غلامی، م.، 1393. تاثیر دوره و شدت های نوری مختلف بر اندازه غده پینه آل در مولدهای صافی ماهی لکه سفید. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 6، شماره 4، صفحات 187 تا 193.
7
Ahangarpour, A.; Fathimoghaddam, H.; Tahmasebi, M.J.andShahbazian, H., 2009. Hypothalamic-pituitary-gonadal axis responses of the male rats to short and long time alternative magnetic fields (50 Hz) exposure. JRMS. Vol. 14, No. 4, pp: 231-238.
8
Ahlbom, I.C.; Cardis, E.; Green, A.; Linet, M.; Savitz, D. and Swerdlow, A., 2001. Review of the Epidemiologic Literature on EMF and Health. Environ Health Perspect. Vol. 109, No. l6, pp: 911-933.
9
Bennett, R., 2013. Growth Hormone Deficiency in Fibromyalgia, Retrieved.
10
Cardis, E.; Richardson, L. and Deltour, I., 2007. The Interphone study: design, epidemiological methods, and description of the study population. Eur J Epidemiol. Vol. 22, No. 9, pp: 647-664.
11
Croft, R.J.; Chandler, J.S.; Burgess, A.P.; Barry, R.J.; Williams, J.D. and Clarke, A.R., 2002. Acute mobile phone operation affects neural function in humans. Clin Neurophysiol. Vol. 113, No. 10, pp: 1623-1632.
12
Dai, Q.I.; Shu, X.O.; Li, H. and Yang, G., 2010. Is Green Tea Drinking Associated with a Later Onset of Breast Cancer? AEP. Vol. 20, No. 1, pp: 74-81.
13
Eftekhari, H.; Haeri Rowhani, A.; Babapour, V.; Parivar, K. and Ranjbar Omrani, Gh., 2007. Effect of pheromones on the plasma level of prolactin during pregnancy and lactating periods in female rat. Physiology & Pharmacology. Vol. 11, No. 2, pp: 107-114.
14
Frystyk, J., 2010. Exercise and the growth hormone-insulin-like growth factor axis. Medicine and science in sports and exercise. Vol. 42, No. 1, pp: 58-66.
15
Gutschi, T.; Mohamad, B.; Al‐Ali Shamloul, R.; Pummer, K. and Trummer, H., 2011. Impact of cell phone use on men’s semen parameters. Andrologia. Vol. 43, No. 5, pp: 312-316.
16
Hall, J.E., 2015. Guyton and Hall Textbook of Medical Physiology E-Book, Elsevier Health Sciences.
17
Hyland, G., 2003. Physics and biology of mobile telephony, The Lancet, Vol. 356, No. 9244, pp: 1833-1836. Not affect the testes. Bio electromagnetics. Vol. 24, No. 3, pp: 182-188.
18
Khurana, V.G.; Teo, C.; Kundi, M. and Hardell, L., 2009. Cell phones and brain tumors: a review including the long-term epidemiologic data. Surgical Neurology. Vol. 72, No. 1, pp: 205-215.
19
McKinlay, A.F.; Allen, S.G.; Cox, R.; Dimbylow, P.J.; Mann, S.M. and Muirhead, C.R., 2004. Review of the scientific evidence for limiting exposure to electromagnetic Fields. Document of the NRBP. Vol. 15, No. 3, pp: 74-124.
20
Paulraj, R. and Behari, J., 1997. Single strand DNA breaks in rat brain cells exposed to microwave radiation. J Pineal Res. Vol. 22, No. 3, pp: 152-162.
21
Sahar, M. and Awad, S., 2008. Health risks of electromagnetic radiation from mobile phone on brain of rat. Journal of Applied Sciences Res. Vol. 4, No. 12, pp: 1994-2000.
22
Salford, LG.; Henrietta, N.; Arne, B. and Gustav, G., 2007. Non thermal effects of EMF upon the mammalian brain. The Environmentalist. Vol. 27, pp: 493-500.
23
Shahabi, S.; Hassanzadeh, T.; Hoseinnezhaddarzi, M.; Mousavi, F.; Shirchi, S.; Nazari, A.; Zarei, H. and Pourabdolhossein, F., 2018. Exposure to cell phone radiofrequency changes orticotrophin hormone levels and histology of the brain and adrenal glands in male Wistar rat. Iran J Basic Med Sci. Vol. 21, No. 12, pp: 1269-1274.
24
Sicard, E. and Delmas, B.S., 2001. Introduction to GSM. 5th. Bedford Ma. Bed Ford Ma Tec online Publication. pp: 1-3.
25
Yüksel, M.; Nazıroğlu, M. and Özkaya, M.O. 2016. Long term exposure to electromagnetic radiation from mobile phones and Wi-Fi devices decreases plasma prolactin, progesterone, and estrogen levels but increases uterine oxidative stress in pregnant rats and their offspring. Endocrine. Vol. 52, No. 2, pp: 352-362.
26
ORIGINAL_ARTICLE
DNA بارکدینگ پرندگان شکاری استان مازندران
شناسایی غنا و تنوع گونه ای یکی از مراحل اساسی برای حفاظت از تنوع زیستی است. شناسایی صحیح پرندگان شکاری براساس ویژگی های ظاهری گونه ها دشوار بوده و بر همین اساس تفکیک گونه ها به کمک داده های مولکولی به تکنیکی کارآمد برای متخصصان علم رده بندی تبدیل شده است. در این مطالعه توالی نوکلئوتیدی ژن (COI) برای 36 نمونه از پرندگان شکاری استان مازندران مورد مطالعه قرار گرفت. استخراج DNA از نمونههای جمع آوری شده از خون و پر پرندگان شکاری استان مازندران انجام شد. 660 جفت نوکلئوتید از توالی ژن مذکور با استفاده از واکنش زنجیره ای پلی مراز تکثیر و توالییابی گردید. نتایج درخت تبارشناسی جدایی چهار خانواده شاهین ها (Falconidae)، عقاب ها (Accipitridae)، جغد انبار (Tytonidae) و سایر جغدهای (Strigidae) استان مازندران را در مجموع 27 گونه در 14 جنس مختلف پرندگان شکاری شناسایی نمود. میانگین واگرایی ژنتیکی بین گونه ای در راسته شاهین شکلان 8/5 و دو راسته عقاب شکلان و جغد شکلان به ترتیب 11/8 و 15/4 محاسبه شد. فاصله ژنتیکی بین گونه ای در راسته شاهین شکلان بین 5/1 تا 12/3، در عقاب شکلان بین 3/9 تا 16/3 و در جغد شکلان در محدوده 14/3 تا 20/8 قرار گرفت. بدین ترتیب می توان محدوده شناسایی گونه ها در پرندگان شکاری مورد مطالعه را براساس محدوده مذکور به خوبی تعیین نمود و هر کدام از این کلادها را به عنوان یک واحد تکاملی معرفی نمود که دارای یک پارچگی ژنتیکی ویژه و شایسته حفاظت است.
http://www.aejournal.ir/article_132906_fbb40eb04ab0371eecf3b14e04cba75c.pdf
2021-04-21
109
118
10.22034/aej.2021.132906
پرندگان شکاری
DNA بارکدینگ
COI
مازندران
جلیل
ایمانی هرسینی
jalil.imani@ut.ac.ir
1
گروه علوم و مهندسی محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
مسعود
نظری زاده
1nazari_zadeh@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
حمیدرضا
رضایی
hamid.r.r1ezaei@gmail.com
3
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
عاطفه
اسدی
imanijalil@yahoo.om
4
آزمایشگاه بیوجغرافی و اکولوژی مهرهداران، مرکز مطالعات علمی ملی مونت پلیه، مونت پلیه، فرانسه
AUTHOR
محمد
کابلی
m1.kaboli@ut.a.ir
5
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
بختیاری، پ.، 1393. پرنده های شکاری ایران. انتشارات ایران شناسی. 456 صفحه.
1
قایدی، ف.؛ ذوالقرنین، ح.؛ نبوی، م.ب.؛ سواری، ا. و سالاری، م.ع.، 1397. شناسایی گونه Callista umbonella (bivalve: Veneridae) با تاکید بر مطالعات مورفولوژیک و مولکولی. فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری. دوره10، شماره 1، صفحات 337 تا 344.
2
کابلی، م.؛ علی آبادیان، م.؛ توحیدی فر، م.؛ هاشمی، ع. و روزلار، ک.، 1391. اطلس پرندگان ایران. سازمان حفاظت محیط زیست. 665 صفحه.
3
Aliabadian, M; Kaboli, M; Nijman, V. and Vences, M; 2009. Molecular Identification of Birds: Performance of Distance-Based DNA Barcoding in Three Genes to Delimit Parapatric Species. Plos One. Vol, 4, pp: 1-8.
4
Bertolazzi, P.; Felici, G. and Weitschek, E., 2009. Learning to classify species with barcodes. BMC Bioinformatics. Vol. 10, No. 14, pp: S7.
5
Blaxter, M.L; 2004. The promise of a DNA taxonomy. The Royal Society. Vol :359, pp: 669-679.
6
Burbrink, F.T; Lawson, R. and Slowinski, J.B., 2000. Mitochondrial DNA phylogeography of the polytypic North American rat snake (Elaphe obsoleta): a critique of the subspecies concept. Evolution. Vol. 54, pp: 2107-2118.
7
Burbrink, F.T. and Castoe, T.A., 2009. Molecular phylogeography of snakes. Snakes: ecology and conservation. pp: 38-77.
8
Carcraft, J., 1983. Species concepts and speciation analysis. Curr. Ornithol. Vol. 1, pp: 159-187.
9
Darriba, D.; Taboada, G.L.; Doallo, R. and Posada, D., 2012. jModelTest 2: more models, new heuristics and parallel computing. Nature methods. Vol. 9, pp: 772-772.
10
Dawnay, N.; Ogden, R.; Mcewing, R.; Carvalho, G.R. and Thorpe, R.S., 2007. Validation of the barcoding gene COI for use in forensic genetic species identification. Forensic Science International. Vol. 15, No. 1, pp: 1-6.
11
Frezal, L. and Leblois, R., 2008. Four years of DNA barcoding: Current advances and prospects. Infection, Genetics and Evolution. Vol. 8, pp: 727-736.
12
Guindon, S. and Gascuel, O., 2003. A simple, fast, and accurate algorithm to estimate large phylogenies by maximum likelihood. Systematic biology. Vol. 52, pp: 696-704.
13
Hajibabaei, M.; Janzen, D.H.; Burns, J.M.; Hallwachs, W. and Hebert, P.D.N., 2006. DNA barcoding distinguishes species of tropical Lepidoptera . Proceedings of the National Academy of Sciences of the USA. Vol. 103, pp: 968-971.
14
Hebert, P.D.N.; Cywinska, A.; Ball, S.L. and deWaard, J.R., 2003. Biological identifications through DNA barcodes. Philosophical Transactions of the Royal Society B. Vol. 270, pp: 313-321.
15
Hebert, P.D.N.; Stoeckle, M.Y.; Zemlak, T.S. and Francis, C.M., 2004. Identification of Birds through DNA Barcodes. PLoS Biology. Vol. 2, pp: 312.
16
Huelsenbeck, J.P. and Ronquist, F., 2001. MRBAYES: Bayesian inference of phylogenetic trees. Bioinformatics. Vol. 17, pp: 754-755.
17
Kerr, K.; Stoeckle, M.; Dove, C.; Weigt, L.; Francis, C. and Hebert, P., 2007. Comprehensive DNA barcode coverage of North American birds. Molecular ecology notes. Vol. 7, pp: 535-543.
18
Kerr, K.C.R.; 2010. Exploring the efficacy, utility, and limitations of DNA barcoding within the class Aves. 148 p.
19
Makowsky, R.; Marshall Jr, J.C.; McVay, J.; Chippindale, P.T. and Rissler, L.J., 2010. Phylogeographic analysis and environmental niche modeling of the plain bellied watersnake (Nerodia erythrogaster) reveals low levels of genetic and ecological differentiation. Molecular phylogenetics and evolution. Vol. 55, pp: 985-995.
20
Park, H.Y.; Yoo, H.S.; Jung, G. and Kim, C.B., 2011. New DNA barcodes for identification of Korean birds. Genes & Genomics. Vol. 33, pp: 91-95.
21
Prum, R.O.; Berv, J.S.; Dornburg, A.; Field, D.J.; Townsend, J.P.; Lemmon, E.M. and Lemmon, A.R., 2015. A comprehensive phylogeny of birds (Aves) using targeted next-generation DNA sequencing. Nature. Vol. 526, pp: 569-573.
22
Rubinoff, D., 2006. DNA barcoding evolution into the familiar. Conservation Biology. Vol.5, pp: 1548-1589.
23
Rubinoff, D., 2006. Utility of Mitochondrial DNA Barcodes in Specie Conservation. Conservation Biology. Vol. 20, pp: 1026-1033.
24
Smith, M.A.; Poyarkov, N.A. and Hebert, P.D.N., 2008. CO1 DNA barcoding amphibians: take the chance, meet the challenge. Molecular ecology resources. Vol.8, pp: 235-246.
25
Stoeckle, M.; Janzen, D.; Hallwachs, W.; Hanken, J. and Baker, J., 2003. Taxonomy DNA, and the Barcode of Life. Draft Conference Report. 10-12 september. New York.
26
Tamura, K.; Peterson, D.; Peterson, N.; Stecher, G.; Nei, M. and Kumar, S., 2011. MEGA5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Molecular biology and evolution. Vol. 28, pp: 2731-2739.
27
Thompson, J.D.; Higgins, D.G. and Gibson, T.J.; 1994. CLUSTAL W: improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position-specific gap penalties and weight matrix choice, Nucleic acids research. Vol. 22, pp: 4673-4680.
28
Torstrom, S.M.; Pangle, K.L. and Swanson, B.J., 2014. Shedding subspecies: The influence of genetics on reptile subspecies taxonomy. Mol. Phylogenet. Evol. Vol. 76, pp: 134-143.
29
Valentini, A.; Pompanon, F. and Taberlet, P., 2008. DNA barcoding for ecologists. Trends in Ecology and Evolution. Vol. 24, pp: 110-117.
30
Ward, R.W.; Zemlak, T.S.; Innes, B.H.; Last, P.R. and Hebert, P.D.N., 2005. DNA barcoding Australia's fish species . Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. Vol. 360 , pp: 1847- 1857.
31
Zink, R.M.; Barrowclough, G.F.; Atwood, J.L. and Blackwell-Rago, R.C., 2000. Genetics, taxonomy, and conservation of the threatened California Gnatcatcher. Conserv. Biol. Vol. 14, pp: 1394.
32
Zink, R.M., 2004. The role of subspecies in obscuring avian biological diversity and misleading conservation policy. Proceedings of the Royal Society of London Series B: Biological Sciences. Vol. 271, pp: 561-564.
33
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی ساختار ژنتیکی جمعیت پرنده شکاری سارگپه معمولی در استان آذربایجان شرقی با استفاده از نشانگرهای ژنتیکی با ماهیت تصادفی PCR-RAPD
مباحث پیرامون، حفافظت ذخایر ژنتیکی گونه های وحشی بحث داغ محافل علمی جهان می باشد.هدف از پژوهش حاضر، ارزیابی کاربری تجزیه و تحلیل نشانگرهای PCR-RAPD برای ارزیابی و تخمین ساختار ژنتیکی، جمعیت پرنده شکاری سارگپه معمولی که یکی از پرندگان شکاری که در به دلیل شکار بی رویه در معرض تهدید جدی است در استان آذربایجان شرقی می باشد. بدین منظور، در مجموعه، 15 عدد از آغازگرهای تصادفی شرکت اپرون، برای تکثیر تعداد 150 جایگاه در ده پرنده مورد استفاده قرار گرفت. در گام اول، خونگیری از ورید بالی سارگپه ها صورت پرندگان محبوس در قفس صورت گرفت و استخراج DNA از خون کامل توسط پروتکل موجود انجام پذیرفت. پس، از امتیازدهی باندهای تولید شده در روی ژل، آغازگر، آغازگر OPA-14، بالاترین میزان باند تولیدی (22 باند) و آغازگر OPA-13 کم ترین میزان باندی (9 باند) را روی ژل متافاور اگاروز 4 درصد و الکتروفورز افقی نشان دادند. هم چنین، تجزیه و تحلیل آماری میزان هتروزیگوتی مشاهده شده توسط نرم افزار پاپ ژن داخل نمونه ها را در حد 0/00008±0/45 برآورد شد. هم چنین محاسبه فاصله ژنتیک و تجزیه کلاستر، نشان داد که از لحاظ ژنتیکی نمونه های مورد مطالعه با یکدیگر تفاوت ژنتیکی دارند. اما شباهت ژنتیکی بالایی بین آن ها برقرار است. با این وجود، استتناجات و تصمیم گیری های مدیریتی در مورد حفاظت ژنتیکی این پرنده نیازمند نمونه گیری های بیش تر از مناطق جغرافیایی متعدد می باشد
http://www.aejournal.ir/article_132966_5c661c57644d74629b89bf6c26cca015.pdf
2021-04-21
119
128
10.22034/aej.2021.132966
سارگپه معمولی
استان آذربایجان شرقی
تنوع ژنتیکی
PCR-RAPD
جواد
قهاری
ghahari1979@yahoo.com
1
اداره کل حفاظت محیط زیست آذربایجان شرقی، تبریز، ایران
LEAD_AUTHOR
شیرین
محمودی
shirin.mahmoodi@ut.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
الیاس زرین قبایی، ق.، 1381. مطالعه پلی مورفیسم ژن بتالاکتو گلوبولین در پنج نژاد گوسفند. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز.
1
دهقان زاده، ه.؛ میرحسینی، ض. و عبدالاحد، ش.، 1383. بررسی تنوع ژنتیکی مرغان بومی ایران با استفاده از نشانگرهای RAPD. مجله پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. دوره 17، شماره 1، صفحات 2 تا 9.
2
محرابی، ع.ا.؛ غلامی، پ.؛ اطمینان، ع. و محمدی، س.، 1395. بررسی ساختار تنوع ژنتیکی جمعیت های درختان بنه (P. atlanticasubsp. mutica) با استفاده از نشانگرهای مولکولی RAPD-PCR. جنگل و فرآورده های چوب (مجله منابع طبیعی ایران). دوره 69، شماره2، صفحات 237 تا 248.
3
نصیری، م.ر.، 1380. درسنامه اولین کارگاه آموزشی مارکرهای مولکولی DNA در اصلاح و پرورش دام. 19 الی 22 اسفند، مشهد.
4
نظری، م.؛ کابلی، م.؛ رضایی، ح.ر.؛ ایمانی، ج.؛ محمدی، ع. و خاکی، س.، 1397. بررسی تاریخ تکاملی زیرگونه کمرکولی جنگلی در کوه های زاگرس، ایران. یافته های نوین در علوم زیستی. جلد 5، شماره 3، صفحات 155 تا 167.
5
یعش بچاری، س.؛ ذوالقرنین،ح.؛ محمدی، م.؛ سالاری علی آبادی،م.ع. و قاسمی، ا.، 1391. بررسی تنوع ژنتیکی ماهی گل خورک Periophthalmus waltoni با استفاده از نشانگرهای RAPD در خلیج فارس. مجله علوم و فنون دریایی. دوره 11، شماره 3، صفحات 64 تا 71.
6
Appa Rao, K.B.C.; Bhat, K.V. and Totey, S.M., 1996. Detection of species specific genetic markers in farm animals through random amplified polymorphic DNA (RAPD) Genetic Analysis. Biomolecular Engineering. Vol. 13, pp: 135-138.
7
Allendorf, D. and Clarkson, J.M., 2012. A simple procedure for optimising the polymerase chain reaction (PCR) using modified Taguchi methods. Nucleic Acids Research. Vol. 22, No. 18, pp: 3801-3805.
8
Abbasi, H.T. and Ahmoorespour, M., 2010. Analsis of genetic diversity of Chukar Partridge population in Khorasan e Razavi province of Iran by RAPS-PCR. Biochem Genet. Vol. 48, pp: 954-961.
9
Barman, H.; Barat, A.; Bharat, M.; Banerjee, Y.; Meher, P.; Reddy, P. and Jana, R., 2003. Genetic variation between four species of Indian major carps as revealed by random amplified polymorphic DNA assays. Aquacult. Vol. 217, pp: 115-123.
10
Batfai, R.; Egedi, S.; Yue, G.H.; Kovacs, B.; Urbanyi, B.; Tamas, G.; Horvath, L. and Orban, L., 2003. Genetic analysis of two common carp broodstocks by RAPD and microsatellite markers. Aquacult. Vol. 219, pp: 157-167.
11
Barzinji, S. and AL Yousif, M.M., 2015. Genetic diversity among three domestic Turkey lines in Erbil using RAPD PCR technique. Garmyam university journal. Vol. 2, pp: 885-899.
12
Chan, K.; Glover, D.R.; Ramage, M.C. and Harrison, D.K., 2008. Low genetic diversity in the ground parrot revealad by randomly amplified DNA fingerprinting.Ann. zool. Fennici. Vol. 45, pp: 211-216.
13
Colonna, V.; Nutile, T.; Ferrucci, R.R.; Fardella, G.; Aversano, M.And Barbujani, G., 2009. Comparing population structure -as inferred from genealogical versus genetic information. Eur. J. Hum. Genet. Vol. 17, pp: 1635-1641.
14
Dewoody, W.T.; Dodds, K.G.; Crawford, A.M. and Medrano, J.F., 2008. Identification and genetic mapping of random amplified polymorphic DNA (RAPD) markers to the sheep genome. Mammalian Genome. Vol. 7, pp: 580-585.
15
Elo, K.; Ivanoff, S.; Jukka, A.; Vuorinen, J.A. and Piironen, J., 1997. Inheritance of RAPD markers and detection of interspecific hybridization with brown trout and Atlantic salmon. Aquacult. Vol. 152, pp: 55-56.
16
Frankham, M., 2010 The polymerase chain reaction. In: Frederick, M.; Ausubel, P.; Brent, R.E.; kingston, D.D.; Moor, M.; Seidman, J.G.; John, A.; Smith, K.S., (eds.). Short protocols in molecular biology. Harvard medical school. pp: 15/1-15/42.
17
Hubisz, M.J.; Falush, D.; Stephens, M. and Pritchard, J.K., 2009. Inferring weak population structure with the assistance of sample group information. Mol. Ecol. Resour. Vol. 9, pp: 1322-1332.
18
Hadrys, H.; Balick, M. and Schierwater, B., 1992. Application of random amplified polymorphic DNA (RAPD) in molecular ecology. Mol. Ecol. Vol. 1, pp: 55-63.
19
Hoban, S.M.; Mezzavilla, M.; Gaggiotti, O.E.; Benazzo, A.; van Oosterhout, C. and Bertorelle, G., 2013. High variance in reproductive success generates a false signature of a genetic bottleneck in populations of constant size: a simulation study. BMC Bioinformatics. Vol. 14, 309 p.
20
Intarapanich, A.; Shaw, P.J.; Assawamakin, A.; Wangkumhang, P.C.; Ngamphiw, K. and Chaichoompu, E., 2009. Iterative pruning PCA improves resolution of highly structured populations. BMC Bioinformatics. Vol. 10, 382 p.
21
Jorde, P.E., 2012. Allele frequency covariance among cohorts and its use in estimating effective size of age structured populations. Mol. Ecol. Resour. Vol. 12, pp: 476-480.
22
Khaliq, I.; Bahar, M.; Riaz, M. and Khan, A.A., 2010. Genetic diversity in see see partridge population from sub Himalayan ranges of Pakistan.Belg.J.Zool. Vol. 140, No. 2, pp: 229-234.
23
Lunch, T.M., 1990. The polymerase chain reaction. Breakthroughs in Bioseience, http://www. bioscience. com.
24
Ogah, D.M. and Momoh, M., 2014. Analsis of genetic diversity of Nigeria Indigenous Nuscovy Duck Ecotypes using RAPD Marker. PTA. Vol. 10, No. 2, pp: 225-232.
25
Nei, M., 1987. Molecular evolutionary genetics. Columbia University Press, New York.
26
Permic, G.; Bassam, B.J. and Gresshoff, P.M., 2014. DNA amplification fingerprinting: A strategy for genome analysis. Plant Mol. Biol. Rep. Vol. 9, pp: 292-305.
27
Ponsuksili, K.B.; Bhat, K.V. and Totey, S.M., 1999. Detection of species-specific genetic markers in farm animals through random amplified ploymorphic DNA (RAPD). Genet. Anal. Vol. 13, No. 5, pp: 135-138.
28
Tubelyte, K.; Gelfand, D.H.; Stoffel, S.; Schare, S.J.; Higuchi, R.; Horn, G.T.; Mullis, K.B. and Erlich, H.A., 2011. Genetic diversity of tufted ducks in Eastern Europe. Science. Vol. 239, pp: 487-491.
29
Williams, J.G.K.; Kubelik, A.R.; Livak, K.J.; Rafalski, J.A. and Tingey, S.V., 1990. DNA polymorphism amplified by arbitrary primers are useful as genetic markers. Nucleic Acids Researeh. Vol. 18, No. 22, pp: 6531-6535.
30
Williams, D.J.; Kazianis, S. and Walter, R.B., 1998. Use of random amplified polymorphic DNA (RAPD) for identification of largemouth bass subspecies and their intergrades. Trans. Am. Fish. Soc. Vol. 127, pp: 825-832.
31
Xi-Quan, G.O.; Myakishev, M.V.; Kapanadze, G.I.; Georgiev, G.P. and Beritashvili, D.R., 1998. Extraction of DNA from the whole blood by silica gel. Institute of gene biology, Moscow, Russia.
32
Yeh, K.B.; Ferre, B.F. and Gibbbs, R.A., 1991. The Polymerase Chain Reaction. Birch, User, Boston MA. pp: 182-200.
33
Zhang, J.; Niyogi, P. and McPeek, M.S., 2009. Laplacian eigenfunctions learn population structure. PLoS ONE. Vol. 4, pp: e7928.
34
ORIGINAL_ARTICLE
مدل سازی مطلوبیت و اولویت بندی عوامل تخریب زیستگاه درنای معمولی (Grus grus) در اکوسیستم های آبی استان مرکزی
تالاب میقان یکی از تالاب های ارزشمند در استان مرکزی و یکی از مهم ترین زیستگاه های زمستان گذرانی درنای معمولی (Grus grus) در ایران است. این تالاب کویری در دو دهه اخیر به دلیل خشکسالی های پیاپی و عدم مدیریت صحیح، با چالش های جدی زیست محیطی مواجه شده است. با بهره گیری از مدل بیشینه آنتروپی (Maxent)، مدل سازی مطلوبیت زیستگاه درنای معمولی در تالاب میقان و اکوسیستم های آبی استان مرکزی با استفاده از 38 نقطه حضور درنای معمولی و 9 متغیر زیست محیطی (اقلیم، پوشش گیاهی، شیب، ارتفاع، کاربری اراضی، فاصله از جاده و راه های ارتباطی، فاصله از آبراهه ها و فاصله از آبادی ها) انجام شد. علاوه براین عوامل تخریب تالاب با استفاده از فرایند تحلیل سلسله مراتبی (AHp ) اولویت بندی شد. سطح زیر منحنی (AUC) حاصل از مدل 0/997 محاسبه گردید که صحت بالای مدل را نشان داد. سه منطقه به عنوان زیستگاه مطلوب درنا شناسایی شد که شامل تالاب میقان، سد کمال صالح در شازند و سد 15 خرداد در شهرستان دلیجان می باشد. نتایج نشان داد که وسعت 4360 هکتار ار اراضی تالاب میقان که حدود 18 درصد از اراضی تالاب را تشکیل می دهد به عنوان زیستگاه مطلوب درنا شناسایی شد. پهنه های زیستگاهی مطلوب در حاشیه آبی - خشکی تالاب میقان واقع شده و گستره های زیستگاهی نامطلوب اغلب در نواحی مرکزی تالاب و هم چنین در پهنه های خشکی دور از آب قرار دارند. کاربری اراضی، تیپ پوشش گیاهی و فاصله از راه های ارتباطی بیش ترین سهم را در مدل به خود اختصاص دادند. احداث جاده، وجود سکونت گاه های انسانی و تغییر کاربری اراضی بیش ترین وزن را در بین عوامل تخریب کسب کردند که در به سازی زیستگاه و بهبود شرایط زیستگاهی این گونه باید در اولویت قرار گیرند.
http://www.aejournal.ir/article_132995_817108e84fb6668973d9f02a622c4495.pdf
2021-05-01
129
138
10.22034/aej.2021.132995
درنای معمولی
تالاب میقان
مکسنت
فرآیند تحلیل سلسله مراتبی
منصوره
ملکیان
mmalekian@cc.iut.ac.ir
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
LEAD_AUTHOR
الهه
عظیمی
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
سعید
پورمنافی
spourmanafi@iut.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
انصاری، ا.، ۱۳۸۶. ارزیابی اکولوژیک تالاب میقان اراک به عنوان زیستگاه زمستان گذران درنای معمولی. پایان نامه دکتری، دانشگاه آزاد واحد علوم تحقیقات، تهران، ایران.
1
انصاری، ا.، 1394. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه درنای معمولی (Grus grus) در تالاب میقان اراک. مجله اکوبیولوژی تالاب، دوره 7، شماره 24. صفحات 57 تا 70
2
انصاری، ا.؛ کلنگری، م.، فرجی، ز.، ۱۳97. شناسایی فون پرندگان منطقه شکار ممنوع تالاب میقان اراک. مجله محیط زیست جانوری. دوره 10، شماره 2، صفحات 65 تا 72.
3
بهروزی راد، ب.، ۱۳9۶. بررسی ساختارجامعه و تنوع پرندگان دریاچه سد شهدای رامشیر در فصول زمستان و بهار. مجله محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 2، صفحات 87 تا 98
4
رﻫﺒﺮ، ب.، ۱۳۸۶. ارزﻳﺎﺑﻲ وﺿﻌﻴﺖ زﻳﺴﺘﮕﺎﻫﻲ ﺗﺎﻻب ﻓﺮﻳﺪوﻧﻜﻨﺎر ﺑﻪ ﻋﻨﻮان ﻣﺤﻞ زﻣﺴﺘﺎن گذرانی درنای ﺳﻴﺒﺮی و ﺗﻬﻴﻪ ﻃﺮح ﻣﺪﻳﺮﻳﺘﻲ ﺑﺮای آن، ﺑﺎ ﺗﺄﻛﻴﺪ ﺑﺮ ﻣﺸﺎرﻛﺖ ﻣﺮدﻣﻲ ﭘﺎﻳﺎن نامه ﻛﺎرﺷﻨﺎﺳﻲارﺷﺪ، رﺷﺘﻪ ﻋﻠﻮم ﻣﺤﻴﻂ زیست. داﻧﺸﮕﺎه آزاد اﺳﻼﻣﻲ واﺣﺪ ﻋﻠﻮم و ﺗﺤﻘﻴﻘﺎت ﺗﻬﺮان.
5
لطفی، ع.؛ حشمت الواعظین، م.؛ گیلی، م. و کاظمی، آ.، ۱۳۹۳. تحلیل اقتصادی گزینه های فعلی بهره برداری از تالاب میقان. مجله محیط زیست طبیعی. دوره ۶۷. شماره ۱، صفحات ۴۱ تا ۵۱ .
6
Almalki, M.; Alrashidi, M.; O'Connell, M.; Shobrak, M. and Szekely, T., 2015. Modelling the distribution of wetland birds on the Red Sea coast in the Kingdom of Saudi Arabia. Applied Ecology and Environmental Research. Vol. 13, pp: 67-84.
7
Anderson, R.P. and Gonzalez, I., 2011. Species-specific tuning increases robustness to sampling bias in models of species distributions: An implementation with Maxent. Ecological Modelling. Vol. 222, No. 15, pp: 2796-2811.
8
Anderson, R.P. and Martı́, E., 2004. Modeling species’ geographic distributions for preliminary conservation assessments: an implementation with the spiny pocket mice (Heteromys) of Ecuador. Biological Conservation. Vol. 116, pp: 167-1796.
9
BirdLifeInternational. 2020. Species factsheet: Grus grus. Downloaded from http://www.birdlife.org on 10/02/2020.
10
Davidson, N.C., 2014. How much wetland has the world lost? Long-term and recent trends in global wetland area. Marine and Freshwater Research. Vol. 65, pp: 936-941.
11
Elith, J.; Phillips, S.J.; Hastie, T.; Dudík, M.; Chee, Y.E. and Yates, C.J., 2011. A statistical explanation of MaxEnt for ecologists. Diversity and Distributions. Vol. 17, pp: 43-57.
12
Fourcade, Y.; Engler, J.O.; Rödder, D. and Secondi, J., 2014. Mapping species distributions with MAXENT using a geographically biased sample of presence data: a performance assessment of methods for correcting sampling bias. PloS one. Vol. 9, pp: e97122.
13
Franco, A.; Brito, J. and Almeida, J., 2000. Modelling habitat selection of Common Cranes Grus gruswintering in Portugal using multiple logistic regression. Ibis. Vol. 142, pp: 351-358.
14
Guisan, A. and Zimmermann, N.E., 2000. Predictive habitat distribution models in ecology. Ecological modelling. Vol. 135, pp: 147-186.
15
Hernandez, P.A.; Graham, C.H.; Master, L.L. and Albert, D.L., 2006. The effect of sample size and species characteristics on performance of different species distribution modeling methods. Ecography. Vol. 29, pp: 773-785.
16
Kim, G.H.; Lee, E.j.; Park, C.; Lee, S.K.; Lee, K.D.; Lee, W.S. and Kim, J.U., 2016. Modeling the habitat of the red crowned crane (Grus japonensis) wintering in Cheorwon Gun to support decision making. Sustainability. Vol. 8, pp: 576.
17
Kumar, S. and Stohlgren, T.J., 2009. Maxent modeling for predicting suitable habitat for threatened and endangered tree Canacomyrica monticola in New Caledonia. Journal of Ecology and Natural Environment. Vol. 1, pp: 094-098.
18
Liu, L.; Zhao, Z.; Zhang, Y. and Wu, X., 2017. Using MaxEnt model to predict suitable habitat changes for key protected species in Koshi Basin, Central Himalayas Journal of Resources and Ecology. Vol.8, pp: 77-87.
19
Mansson, J.; Nilsson, L. and Hake, M., 2013. Territory size and habitat selection of breeding Common Cranes (Grus grus) in a boreal landscape. Ornis Fennica. Vol. 90, pp: 65-72.
20
Morrison, M.L.; Marcot, B.G. and Mannan, R.W., 1992. Wildlife–Habitat Relationships: Concepts and Applications. University of Wisconsin Press, Madison, WI. 521 p.
21
Nick, R., 2009. Planting wetlands and dam, a practical guide to wetland design construction and propagation. 4th Edition, Published by Landlinks Press, Collinwood, Australia. 23 p.
22
Norris, D., 2014. Model thresholds are more important than presence location type: Understanding the distribution of lowland tapir (Tapirus terrestris) in a continuous Atlantic forest of southeast Brazil. Tropical Conservation Science. Vol.7, No. 3, pp: 529-547.
23
Pearson, R.G.; Raxworthy, C.J.; Nakamura, M. and Peterson, A.T., 2007. Predicting species distributions from small numbers of occurrence records: a test case using cryptic geckos in Madagascar. Journal of Biogeography. Vol. 34, pp: 102-117.
24
Peterson, A.T.; Radocy, T.; Hall, E.; Kerbis-Peterhans, J.C. and Celesia, G.G., 2014. The potential distribution of the Vulnerable African lion Panthera leo in the face of changing global climate. ORYX. Vol. 48, pp: 555-564.
25
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapired, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological Modelling. Vol. 190, pp: 231-259.
26
Phillips, S.J. and Dudík, M., 2008. Modeling of species distributions with Maxent: new extensions and a comprehensive evaluation. Ecography. Vol. 31, pp: 161-175.
27
Qin, A.; Liu, B.; Guo, Q.; Bussmannd, R.W. Ma, F.; Jiane, Z.; Xue, G. and Peie, S., 2017. Maxent modeling for predicting impacts of climate change on the potential distribution of Thuja sutchuenensis Franch., an extremely endangered conifer from southwestern China. Global Ecology and Conservation. Vol. 10, pp: 139-146.
28
Remya, K.; Ramachandran, A. and Jayakumar, S., 2015. Predicting the current and future suitable habitat distribution of Myristica dactyloides, using MaxEnt model in the Eastern Ghats, India. Ecological Engineering. Vol. 82, pp: 184-188.
29
Stabach, J.A.; Laporte, N. and Olupot, W., 2009. Modeling habitat suitability for Grey Crowned-cranes (Balearica regulorum gibbericeps) throughout Uganda. International Journal of Biodiversity and Conservation. Vol.1, pp: 177-186.
30
Wisz, M.S.; Hijmans, R.J.; Li, J.; Peterson, A.T.; Graham, C.H. and Guisan, A., 2008. Effects of sample size on the performance of species distribution models. Diversity and Distributions. Vol. 14, pp: 763-773.
31
Zakaria, M. and Rajpar, M.N., 2013. Density and diversity of water birds and terrestrial birds in man-made marsh, Malaysia. Sains Malaysiana. Vol. 24, pp: 0282-0294.
32
ORIGINAL_ARTICLE
مدلسازی توزیع زیستگاه دراج (Francolinus francolinus) با الگوریتم بیشینه بینظمی در منطقه سیستان
اثر تغییر اقلیم و خشکسالی های متوالی در منطقه سیستان بر تخریب زیستگاه گونه های وحشی بر کسی پوشیده نیست. در این بین گونه هایی که زیستگاه نزدیک به مناطق مسکونی دارند، در فشار مضاعفی به علت تهدیدات انسانی قرار دارند. دراج یکی از این گونهها است که در این تحقیق به منظور مدل سازی توزیع زیستگاه احتمالی آن، روش بیشینه بی نظمی MaxEnt به کار گرفته شد. مدل سازی با توجه به نُه متغیر محیط زیستی مورد توجه قرار گرفته است. قبل از اجرای الگوریتم مذکور از عدم وجود همبستگی بین متغیرها اطمینان حاصل شد. نتایج ارزیابی مدل بر اساس سطح زیر منحنی ROC نشان داد که مدل نسبت به حالت تصادفی پیشبینی عالی دارد. از بین متغیرهای محیطی بررسی شده بیش ترین درصد سهم را، فاصله از زمین های کشاورزی و بیش ترین اهمیت را، متغیر تیپ پوشش علف زار دارد. بر اساس آستانههای ETSS و MTSS، وسعت زیستگاه مطلوب دراج به ترتیب 1545/25 و 1676 کیلومتر مربع برآورد شد. مطلوب ترین مناطق برای این گونه در شرق سیستان جایی که بیش ترین اراضی کشاورزی وجود دارد. در این محدوده ها هیچ منطقه حفاظت شده ای وجود ندارد و به دلیل توزیع گسترده کاربری های شهری و روستایی در این مناطق، امکان تخصیص اراضی به کاربری حفاظتی نیز وجود ندارد بنابراین تنها با تدابیر مدیریتی و مشارکت مردمی بقاء این گونه میسر است.
http://www.aejournal.ir/article_133033_99be6cdb390f3458e79da32919db4ffe.pdf
2021-04-21
139
146
10.22034/aej.2021.133033
دراج
توزیع
ارجحیت زیستگاه
پرندگان قابل شکار
ملیحه
عرفانی
maliheerfani@uoz.ac.ir
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه زابل، زابل، ایران
LEAD_AUTHOR
فاطمه
جهانی شکیب
jahanishakib@birjand.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه بیرجند، بیرجند، ایران
AUTHOR
اکرم
عنایت
akramenayat75@gmail.com
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه زابل، زابل، ایران
AUTHOR
زمانی، ن.؛ حاتمی، ج.؛ شبیری، س.م. و کبودوندپور، ش.، 1399. بررسی نقش آموزش محیط زیست در جوامع محلی بر کاهش تعارض انسان و حیات وحش. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 12، شماره 1، صفحات 31 تا 141.
1
کابلی، م.؛ علی آبادیان، م.؛ توحیدی فر، م.؛ هاشمی، ع.؛ موسوی، ب. و روزلار، ک.، 1395. اطلس پرندگان ایران. انتشارات جهاد دانشگاهی. 628 صفحه.
2
گلزار، ا.؛ شمس اسفندآباد، ب.؛ مرشدی، ج.؛ نادری، م. و جوزی، س.ع.، 1398. بررسی تنوع گونه ای پرندگان آبزی و کنار آبزی زمستان گذران در دریاچه چغاخور در استان چهارمحال و بختیاری. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 11، شماره 4، صفحات 93 تا 100.
3
نوری، غ.ر.؛ اربابی، ط. و نوری، س.، 1386. تالاب هامون حیات سیستان. انتشارات سپهر. 131صفحه.
4
نوری، غ.؛ شهریاری، ع.؛ عرفانی، م. و کریمی، ص.، 1389. اطلس گونههای شاخص گیاهی و جانوری استان سیستان و بلوچستان. انتشارات سپهر. 244 صفحه.
5
Heidari, N.; Arbabi, T.; Noori, G. and Shahriari, A., 2009. Distribution, Population, and Ecology of Black Francolin Francolinus francolinus bogdanovi on the Sistan Plain, in Relation to Plant Coverage and Drought. Podoces. Vol. 4, No. 1, pp: 28-36.
6
BirdLife International. 2018. Francolinus francolinus. The IUCN Red List of Threatened Species 2018: e. T22678719A131903818. https://dx.doi.org/10.2305/ IUCN. UK.2018-2. RLTS.T22678719A131903818.en.
7
Behbash, R.; Karami, M.; SalmanMahiny, A.R.; Nabavi, M. and Khorasani, N., 2010. Effect of plant cover on presence of Black Francolin (Francolinus francolinus) in Khouzestan Province, Southwestern Iran. African Journal of Biotechnology. Vol. 9, No. 25, pp: 3847-3851.
8
Forcina, G.; Guerrini, M.; Khaliq, I.; Ahmed Khan, A. and Barbanera, F., 2018. Human-modified biogeographic patterns and conservation in game birds: The dilemma of the black francolin (Francolinus francolinus, Phasianidae) in Pakistan, PLoS ONE. Vol. 13, No. 10, e0205059.
9
Hanane, S. and Magri, N., 2016. Post-release habitat utilisation by Francolinus bicalcaratus ayesha, a critically endangered subspecies endemic to Morocco: Implications for optimising future release programmes. Bird Conservation International. Vol. 26, No. 3, pp: 323-336.
10
Khaleghizadeh A.; Roselaar K.; Scott D.A.; Tohidifar M.; Mlíkovský J.; Blair M. and KvartalnovP., 2017. Birds of Iran: Annotated Checklist of the Species and Subspecies. Iranian Research Institute of Plant Protection. 350 p.
11
Negi, P. and Lakhera, P.C., 2015. Breeding habitat preference of black francolin Francolinus francolinus asiae in chamoli district of Uttarakhand, Western Himalaya. International Journal of Advanced Research. Vol. 3, No. 4, pp: 540-544.
12
Roberts T.J., 1991. The Birds of Pakistan. Vol. I, Oxford University Press Oxford. U.K, pp. 230–233.
13
Khalil, S. and Anwar, M., 2016. Habitat preference of grey francolin (Francolinus pondicerianus) in salt range, Punjab. The Journal of Animal & Plant Sciences. Vol. 26, No. 3, pp: 842-849.
14
Kukreti, M., 2017. Population dynamics of black francolin (Francolinus francolinus) from Nijmula valley, Garhwal Himalaya, India. Journal of Global Biosciences. Vol. 6, No. 8, pp: 5189-5192.
15
Noori Jangi, M.; Noori, G. and Karami, M., 2019. Threatening and destructing factors associated with the habitat of francolin in Sistan region (Case study: Jazinak corridor). Int. J. Environ. Sci. Technol. Vol. 16, pp: 1967-1972.
16
Moreno, R.; Zamora, R.; Molina Martínez, J.R.; Vasquez, A. and Herrera Machuca, M.A., 2011. Predictive modeling of microhabitats for endemic birds in south Chilean temperate forests using maximum entropy (MaxEnt), Ecol. Inform. Vol. 6, pp: 364-370.
17
Kumar, A.; Sharma, D.K.; Lochan, R.; Dewan, S. and Negi, S., 2020. Relative abundance, habitat preference, and breeding ecology of Asian Black francolin, Francolinus francolinus asiae (Bonaparte, 1856) from North-Western Himalaya. Journal of Asia-Pacific Biodiversity. In press. https://doi.org/10.1016/j.japb.2020.02.001.
18
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه و مقایسه رفتار انتخاب محل آشیانه سازی دو زیرگونه گنجشک رودخانهای (Passer moabiticus mesopotamicus Zarudny, 1904 and P. m. yatii Sharpe, 1888) در ایران
انتخاب محل آشیانه سازی یک جزء کلیدی برای بقاء پرندگان محسوب می شود که پویایی جمعیت ها را تحت تأثیر قرار می دهد. بنابراین شناسایی خصوصیات محل آشیانه سازی یک گام اساسی برای حفاظت از زیستگاه های مطلوب گونه ها محسوب می شود. گنجشک رودخانه ای با جمعیت های پراکنده و دو زیرگونه در ناحیه جنوبی ایران به لحاظ تاکسونومی و بوم شناسی وضعیت مبهمی دارد. بررسی رفتار انتخاب زیستگاه در مقیاس خرد ابزاری سودمند برای آشکار شدن وضعیت این گونه و حفاظت از آنها است. به این منظور در این مطالعه چندین متغیر زیستگاهی در نقاط حضور و عدم حضور این گونه در پلات های به شعاع 50 متر در پارک ملی کرخه شهرستان شوش (20نقطه حضور و 22 عدم حضور) و یکی از زیستگاه های شهرستان زابل (25 حضور و 15 عدم حضور) به منظور تعین ارتباط و اهمیت این متغیرها با حضور و عدم حضور آن ها اندازه گیری و میزان معنی داری هر یک با استفاده از روش رگرسیون منطقی خطی بر اساس مدل تعمیم یافته خطی (GLM) مورد بررسی قرار گرفت. بر اساس نتایج به دست آمده از بین متغیرهای زیستگاهی (DBH، درصد درخت گز، درصد بوته بلند، بوته کوتاه و علفی، زمین بدون پوشش، فاصله با منبع آبی، ارتفاع درخت، استحکام درخت و قطر بزرگ و کوچک درخت در محل ساخت آشیانه)، درصد درخت گز و فاصله از آب مهم ترین متغیرهای محیطی موثر بر لانه گزینی هر دو زیر محسوب می شوند. با توجه به وابستگی این گونه به درخت گز و منابع آب شیرین، لازم است مدیران جهت حفاظت از این دو زیر گونه به خصوص زیرگونه P. m. yatii، از آن جایی که این زیرگونه به لحاظ جغرافیایی و ژنتیکی منزوی شده است، توجه ویژه ای به حفاظت از گزستان های نزدیک به رودخانه ها و دریاچه هامون داشته باشند.
http://www.aejournal.ir/article_133076_d321ada07ab4ede99912e6745831a678.pdf
2021-04-21
147
156
10.22034/aej.2021.133076
متغیرهای زیستگاهی
گنجشک رودخانه ای
انتخاب محل آشیانه
مدل تعمیم یافته خطی (GLM)
بیتا
شمس
ba_sh57@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد
کابلی
mkaboli@ut.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
سید بابک
موسوی
info@babakmusavi.com
3
کمیته ثبت پرندگان ایران
AUTHOR
الهامی راد، ا.؛ رضایی، ح.ر.؛ وارسته مرادی، ح. و کابلی، م.، 1394. متغیرهای زیستگاهی تاثیرگذار بر انتخاب زیستگاه کوکر شکم سیاه (Pterocles orientalis) در فصل تابستان در پناهگاه حیات وحش شیراحمد سبزوار. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 7، شماره 1، صفحات 113 تا 118
1
کابلی، م.؛ علی آبادیان، م.؛ توحیدی فر، م.؛ هاشمی، ع.ر. و موسوی، س.ب.، 1395. اطلس پرندگان ایران، انتشارات جهاد دانشگاهی واحد استان البرز (خوارزمی). 628 صفحه.
2
Abe, F.; Hasegawa, O.; Kudo, T. and Higashi, S., 2007. Nest-site selection of northern goshawks and eurasian sparrowhawks in fragmented landscape in northern Japan Nest. Journal of raptor research. Vol. 41, No. 4, pp: 299-306.
3
Aguilar, T.M.; Dias, R.I.; Oliveira, A.C. and Macedo, R.H., 2008. Nest-site selection by Blue-black Grassquits in a Neotropical savanna: do choices influence nest success? Journal Field Ornithology. Vol. 79, No. 1, pp: 24-31.
4
Austin, G.T., 1974. Nesting success of the Cactus Wren in relation to nest orientation. Condor. Vol. 76, pp: 216-217.
5
Ayé, R.; Roth, T.; Sayedi, S.I. and Stalling, T., 2012. Sistan (Afghan) Scrub Sparrow Passer (moabiticus) yatii: Notes on Common Name, Status and Threats, Podoces. Vol. 7, No. 1/2.
6
Benson, T.J.; Anich, N.M.; Brown, J.D. and Bednarz, J.C., 2009. Swainson's Warbler Nest-Site Selection in Eastern Arkansas. The Condor. Vol. 111, No. 4, pp: 694-705.
7
Bisson, I.A.; Ferrer, M. and Bird, D.M., 2002. Factors influencing nest-site selection by Spanish Imperial Eagles, Journal of Field Ornithology. Vol. 73, No. 3, pp: 298-302.
8
Bock, C.E., 1970. The ecology and behavior of the Lewis’ Woodpecker (Asyndesmus lewis). University of California Publications in Zoology. Vol. 92, pp: 1-100.
9
Bollman, K.; Weibel, P. and Graf, R.F., 2005. An analysis of central Alpine capercaillie spring habitat at the forest stand scale. Forest ecology and management. Vol. 215, pp: 307-318.
10
Boulton, R.L.; Cassey, P.; Schipper, C. and Clarke, M.F., 2003. Nest site selection by yellow-faced honeyeaters Lichenostomus chrysops. Journal of Avian Biology. Vol. 34, pp: 267-274.
11
Boyce, M.S. and McDonald, L.L., 1999. Relating populations to habitats using resource selection functions. Trends in Ecology and Evolution. Vol. 14, pp: 268-272.
12
Brown, C.R. and Brown, M.B., 1996. The evolution of coloniality, pp: 449-483. In Coloniality in the Cliff Swallow. University of Chicago Press, Chicago, IL.
13
Bulluck, L.P. and Buehler, D.A., 2008. Factors influencing golden-winged warbler (Vermivora chrysoptera) nest-site selection and nest survival in the Cumberland Mountains of Tennessee. Auk. Vol. 121, pp: 551-559.
14
Burnham, K.P. and Anderson, D.R., 2002. Model selection and inference: a practical information theoretic approach. Springer-Verlag, New York, New York, USA.
15
Burhans, D.E. and Thompson, F.R.III., 1999. Habitat patch size and nesting success of Yellow-breasted Chats. Wilson Bull. Vol. 111, pp: 210-215.
16
Chalfoun, A.D. and Martin, T.E., 2007. Assessments of habitat preferences and quality depend on spatial scale and metrics of fitness. J of applied ecology. Vol. 44, pp: 983-992.
17
Chase, M.K., 2002. Nest Site Selection and nest success in song sparrow population: the significance of spatial variation. The Condor. Vol. 104, No. 1, pp: 103-116.
18
Cody, M.L., 1981. Habitat selection in birds: the roles of vegetation structure, competitors and productivity. BioScience. Vol. 31, pp: 107-113.
19
Coulson, J.C., 2002. Colonial breeding in seabirds, pp: 87-114. InSchreiber, E.A. and Burger, J., [EDS.], Biology of marine birds. CRC Press, Boca Raton, FL.
20
Davis, S.K., 2005. Nest-site selection patterns and influence of vegetation on nest survival of mixed-grass prairie, Source. The Condor. Vol. 107, No. 3, pp: 605-616.
21
Dinsmore, S.J.; White, G.C. and Knopf, F.L., 2002. Advanced techniques for modeling avian nest survival. Ecology. Vol. 83, pp: 3476-3488.
22
Drever, M.C. and Clark, R.G., 2007. Spring temperature, clutch initiation date, and duck nest success: a test of the mismatch hypothesis. Journal of Animal Ecology. Vol. 76, pp: 139-148.
23
Fox, J. and Weisberg, S., 2011. An R Companion to Applied Regression, Second Edition. Thousand Oaks CA: Sage. http://socserv.socsci.mcmaster.ca/jfox/Books/Companion.
24
Fretwell, S.D. and. Lucas, H.L., 1970. On territorial behavior and other factors influencing habitat distribution in birds. Acta Biotheoretica. Vol. 19, pp: 16-36.
25
Gloutney, M.L. and Clark, R.G., 1997. Nest-site selection by Mallards and Blue Winged Teal in relation to microclimate. Auk. Vol. 114, pp: 381-395.
26
Green, G.A. and Anthony, R.G., 1989. Nesting success and habitat relationships of Burrowing Owls in the Columbia Basin, Oregon. Condor. Vol. 91, pp: 347-354.
27
Hilde´n, O., 1965. Habitat selection in birds, a review. Annales Zoologici Fennici. Vol. 2, pp: 53-75.
28
Holway, D.A., 1991. Nest-site selection and the importance of nest concealment in the Black-throated Blue Warbler. Condor. Vol. 93, pp: 575-581.
29
Janes, S.W., 1985. Habitat selection in raptorial birds. pp: 159-188 in Habitat selection in birds (Cody, M.L., Editor). Academic Press Inc., Orlando, Florida, USA.
30
Jedlikowski, J.; Chibowski, P.; Karasek, T. and Brambilla, M., 2016. Multi-scale habitat selection in highly territorial bird species: Exploring the contribution of nest, territory and landscape levels to site choice in breeding rallids (Aves: Rallidae). Acta Oecologica. Vol. 73, pp: 10-20.
31
Joern, W.T. and Jackson, J.F., 1983. Homogeneity of vegetational cover around the nest and avoidance of nest predation in Mockingbirds. Auk. Vol. 100, pp: 497-499.
32
Kilgo, J.C.; Sargent, R.A.; Chapman, B.R. and Miller, K.V., 1996a. Nest site selection of Kentucky Warblers in bottomland hardwoods of South Carolina. J. Field Ornithol. Vol. 67, pp: 300-306.
33
Kilgo, J.C.; Sargent, R.A.; Chapman, B.R. and Miller, K.V., 1996b. Nest site selection by Hooded Warblers in bottomland hardwoods of South Carolina. Wilson Bull. Vol. 108, pp: 53-60.
34
Kirwan, G.M., 2004. The taxonomic position of the Afghan Scrub Sparrow Passer (moabiticus) yatii, Available from: Guy M. Kirwan.
35
Latif, Q.S.; Sacha, K.H. and Rotenberry, J.T., 2011. An ecological trap for yellow warbler nest microhabitat selection. Oikos. Vol. 120, pp: 1139-1150.
36
Lanham, J.D. and Miller, S.M., 2006. Monotypic Nest Site Selection by Swainson's Warbler in the Mountains of South Carolina. Southeastern Naturalist. Vol. 5, No. 2, pp: 289-294.
37
Lee, W.S.; Kwon, Y.S.; Yoo, J.C.; Songb, M.Y. and Chonb, T.S., 2006. Multivariate analysis and self-organizing mapping applied to analysis of nest-site selection in Black Tailed Gulls. Ecological Modelling. Vol. 193, pp: 602-614.
38
Lennington, S., 1980. Female choice and polygyny in Red Winged Blackbirds. Anim. Behav. Vol. 28, pp: 347-361.
39
Lusk, J.J.; Wells, K.S.; Guthery, F.S. and Fuhlendorf, S.D., 2003. Lark Sparrow (Chondestes Grammacus) Nest Site Selection and Success in a Mixed Grass Prairie. The Auk. Vol. 120, No. 1, pp: 120-129.
40
Maguire, G.S., 2006. Fine-scale habitat uses by southern emu-wren (Stipiturus malachurus). Wildlife Research. Vol. 33, pp: 137-148.
41
Manly, B.F.J.; McDonald, L.L.; Thomas, D.L.; McDonald, T.L. and Erickson, W.P., 2002. Resource selection by animals: statistical design and analysis for field studies. Dordrecht, Netherlands, Kluwer. 221 p.
42
Martin, T.E. and Roper, J.J., 1988. Nest predation and nest site selection of a western population of the Hermit Thrush. Condor. Vol. 90, pp: 51-57.
43
Martin, T.E.; Paine, C.R.; Conway, C.J.; Hochachka, W.; Allen, P. and Jenkins, J.W., 1997. BBIRD field protocol. Montana Cooperative Wildlife Research Unit, University of Montana, Missoula, MT.
44
Martínez, G.; Baladrón, A.V.; Cavalli, M.; BÓ, M.S. and Isacch, J.P., 2017. Microscale nest-site selection by the Burrowing Owl (Athene cunicularia) in the pampas of Argentina Source. The Wilson Journal of Ornithology. Vol. 129, No. 1, pp: 62-70.
45
Marks, J.S., 2001. Assessing nest-sit selection in Owles: random is not always better. Journal of Field Ornithology. Vol. 72, No. 3, pp: 462-464.
46
Misenhelter, M.D. and Rotenberry, J.T., 2000. Choices and consequences of habitat occupancy and nest site selection in Sage Sparrows. Ecology. Vol. 81, pp: 2892-2901.
47
Newlon, K.R. and Saab, V.A., 2011. Nest-Site Selection and Nest Survival of Lewis's Woodpecker in Aspen Riparian Woodlands. The Condor. Vol. 113, No. 1, pp: 183-193.
48
Paton, P.W.C., 1994. The effect of edge on avian nest success: how strong is the evidence? Conservation Biology. Vol. 8, pp: 17-26.
49
Pidgeon, A.M.; Radeloff, V.C. and Mathews, N.E., 2003. Landscape scale patterns of black-throated sparrow (Amphispiza bilineata) abundance and nest success. Ecological Applications. Vol. 13, pp: 530-542.
50
Polak, M., 2007. Nest-Site Selection and Nest Predation in the Great Bittern Botaurus stellaris Population in Eastern Poland. Ardea. Vol. 95, No. 1, pp: 31-38.
51
Pobprasert, K. and Gale, G.A., 2010. Nest-Site Selection by Abbott's Babblers Malacocincla abbotti in Northeastern Thailand. Acta Ornithologica. Vol. 45, No. 1, pp: 67-74.
52
Porter, R. and Aspinall, S., 2010. Birds of the Middle East Second Edition. Christopher Helm. 400 p.
53
Powell, L.L.; Hodgman, T.P.; Glanz, W.E.; Osenton, J. D. and Fisher, C.M., 2010. Nest-Site Selection and Nest Survival of the Rusty Blackbird: Does Timber Management Adjacent to Wetlands Create Ecological Traps? The Condor. Vol. 112, No. 4, pp: 800-809.
54
Quinney, T.E.; Hussel, D.J. and Ankney, C.D., 1986. Sources of variation in growth of Tree Swallows. Auk. Vol. 103, pp: 389-400.
55
Rader, M.J.; Brennan, L.A.; Hernandez, F.; Silvy, N.J. and Wu, B., 2007. Nest-site selection and nest survival of northern Bobwithe in southern Texas. The Wilson Journal of Ornithology. Vol. 119, No. 3, pp: 392-399.
56
Rodewald, A.D., 2004. Nest-searching cues and studies of nest-site selection and nesting success, Journal of Field Ornithology. Vol. 75, No. 1, pp: 31-39.
57
Rotenberry, J.T. and Wiens, J.A., 1991. Weather and reproductive variation in shrubsteppe sparrows: a hierarchical analysis. Ecology. Vol. 72, pp: 1325-1335.
58
Rotenberry, J.T. and Wiens, J.A., 1998. Foraging patch selection by shrubsteppe sparrows. Ecology. Vol. 79, pp: 1160-1173.
59
Saab, V.A. and Vierling, K.T., 2001. Reproductive success of Lewis’s Woodpecker in burned pine and cottonwood riparian forests. Condor. Vol.103, pp: 491-501.
60
Sedgwick, J.A. and Knppf, F.L., 1992. Describing illow Flycatcher habitats: scale perspectives and gender differences. Condor. Vol. 94, pp: 720-733.
61
Siepielski, A.M.; Rodewald, A.D. and Yahner, R.H., 2001. Nest site selection and nesting success of the red-eyed viro in central. The Wilson Bulletin. Vol. 113, No. 3, pp: 302-307.
62
Small, M.F. and Hunter, M.L., 1988. Forest fragmentation and avian nest predation in forested landscapes. Oecologia. Vol. 76, pp: 62-64.
63
Smith, L.A.; Nol, E.; Burke, D.M. and Elliott, K.A., 2007. Nest-sit selection of Rose-breasted Grosbeaks in southern Ontario. The Wilson Journal of Ornithology. Vol. 119, No. 2, pp:151-161.
64
Summers-Smith, J.D., 1988. The Sparrows a study of the genus Passer, Print-on-demand and digital editions published 2010 by T & AD Poyser, an imprint of A&G Black Publishers Ltd, 36 Soho quare, London W1D 3QY.
65
Svardson, G., 1949. Competition and habitat selection in birds. Oikos. Vol. 1, pp: 157-174.
66
Tobalske, B.W., 1997. Lewis’s Woodpecker (Melanerpes lewis), no 384. InPoole, A. and Gill, F., [EDS.], The birds of North America. Academy of Natural Sciences, Philadelphia.
67
Thomson, D.L.; Monaghan, P. and Furness, R.W., 1998. The demands of incubation and avian clutch size. Biol. Rev. Vol. 73, pp: 293-304.
68
Yosef, R.; Zduniak, P. and Tryjanwski, P., 2004. Age, sex and season related biometrics of the dead sea sparrow Passer moabiticus. Ardeola. Vol. 51, No. 2, pp: 297-302.
69
Warkentin, I.G.; Roberts, S.E.; Flemming, S.P. and Fisher, A.L., 2004. Nest-site characteristics of Northern Waterthrushes. Journal of Field Ornithology. Vol. 75, No. 1, pp: 79-88.
70
Wiebe, K.L., 2001. Microclimate of tree cavity nests: Is it important for reproductive success in Northern Flickers? Auk. Vol. 118, pp: 412-421.
71
Williams, J.B., 1996. Energetics of avian incubation. pp: 375-415. In Carey, C., ed. Avian energetics and nutritional ecology. Chapman and Hall, London.
72
Zanette, L.; Clinchy, M. and Smith, J.N.M., 2006. Food and predators affect egg production in Song Sparrows. Ecology. Vol. 87, pp: 2459-2467.
73
Zharikov, Y.; Lank, D.B.; Huettmann, F.; Bradley, R.W.; Parker, N.; Yen, P.P.W.; McFarlane Tranquilla, L. and Cooke, F., 2016. Nest Site Selection and Breeding Success in Marbled Murrelets in Relation to Distances to Edges and Forest Patch Size, at Desolation and Clayoquot Sounds, British Colombia, Canada.
74
Zhou, D.; Zhou, C.; Kong, X. and Deng, W., 2011. Nest Site Selection and Nesting Success of Grey-Backed Thrushes in Northeast China. The Wilson Journal of Ornithology. Vol. 123, No. 3, pp: 492-501.
75
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی وقوع بیماری زئونوز ناشی از کریپتوکوکوس نئوفورمنس در کوکاتیل (عروس هلندی) خانگی
کریپتوکوکوس مسبب بیماری کریپتوکوکوزیس به ویژه در افراد دارای تضعیف سیستم ایمنی است. کریپتوکوکوزیس توسط کریپتوکوکوس نئوفورمنس یا کریپتوکوکوس گاتی ایجاد می شود. این مطالعه به منظور بررسی آلودگی کوکاتیل های (عروس هلندی) خانگی به کریپتوکوکوس نئوفورمنس در شهر اهواز صورت گرفت. تعداد 58 نمونه (18 سواپ کلواک، 40 فضله خشک) از کوکاتیل های خانگی در شهر اهواز جمع آوری شد. DNA نمونه ها پس از جمع آوری، جهت تست PCR استخراج شد. جهت شناسایی جدایه های مثبت کریپتوکوکوس نئوفورمنس از یک جفت پرایمر در آزمون PCR استفاده شد. در ادامه برای افزایش دقت شناسایی، آزمون Nested PCR به کار گرفته شد. از 58 نمونه مدفوعی کوکاتیل های خانگی 4 مورد آلوده به کریپتوکوکوس نئوفورمنس بودند.، 2 مورد از سوآپ های کلواک (11/11%) و 2 مورد از فضولات خشک (5%)، آلوده به کریپتوکوکوس نئوفورمنس بودند. واریته و سروتیپ موارد مثبت مشخص شد. همه موارد مثبت متعلق به سروتیپ A کریپتوکوکوس نئوفورمنس واریته گروبی بودند. با توجه به مثبت بودن کوکاتیل های خانگی به کریتوکوکوس نئوفورمنس، افراد مبتلا به تضعیف سیستم ایمنی نظیر افراد مبتلا به AIDS و HIV باید از تماس با این پرندگان اجتناب کنند. هم چنین فروشگاه های حیوانات خانگی از لحاظ بهداشت عمومی حائز اهمیت می باشند.
http://www.aejournal.ir/article_133169_d1de5a52e39888111baeec026a587eb3.pdf
2021-04-21
157
162
10.22034/aej.2021.133169
کریپتوکوس نئوفورمنس
کوکاتیل خانگی
Nested-PCR
ندا
شریفی
sharifi.n87@gmail.com
1
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
فروغ
طلازاده
ftalazade@gmail.com
2
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
رمضانعلی
جعفری
jafari.ramezanali@scu.ac.ir
3
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
مسعود
قربانپور
m.ghorbanpoor@scu.ac.ir
4
گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
Chae, H.S.; Park, G.N.; Kim, S.H.; Jo, H.J.; Kim, J.T.; Jeoung, H.Y.; An, D.J.; Kim, N.H.; Shin, B.W.; Kang, Y.I. and Chang, K.S., 2012. Rapid direct identification of Cryptococcus neoformans from pigeon droppings by nested PCR using CNLAC1 gene. Poultry Science Association Inc. Vol. 91, No. 8, pp: 1983-1989.
1
Cheng, M.F.; Chiou, C.C.; Liu, Y.C.; Wang, H.Z. and Hsieh, K.S., 2001. Cryptococcus laurentii fungemia in a premature neonate. Journal of Clinical Microbiology. Vol. 39, No. 4, pp: 1608-1611.
2
Cogliati, M., 2013. Global Molecular Epidemiology of Cryptococcus neoformans and Cryptococcus gattii: An Atlas of the Molecular Types. Scientifica.675213.
3
Feng, X.; Fu, X.; Ling, B.; Wang, L.; Liao, W. and Yao, Z., 2013. Development of a Singleplex PCR Assay for Rapid Identification and Differentiation of Cryptococcus neoformans var. grubii, Cryptococcus neoformans var. neoformans, Cryptococcus gattii, and Hybrids. Journal of Clinical Microbiology. Vol. 51, No. 6, pp: 1920-1923.
4
Ferreira, P.K.; Andrade-Silva, L.; Mora, D.J.; Pedrosa, A.L.; Rodrigues, V. and Silva-Vergara, M.L., 2001. Genotyping og cryotococcus neoformans isolated from captive birds in Uberaba, Minas Grais, Brazil. Mycoses. Vol. 54, No. 5, pp: 294-300.
5
Heitman, J.; Kozel, T.R. and Kwon-Chung, K.J., 2010. Cryptococcus from human pathogen to model yeast. Washington: ASM Press.
6
Kohler, J.R.; Casadevall, A. and Perfect, J., 2015. The spectrum of fungi that infects humans. Cold Spring Harb Perspect Med. Vol. 5, No. 1, pp: a019273.
7
Lagrou, K.; Van Eldere, J.; Keuleers, S.; Hagen, F.; Merckx, R.; Verhaegen, J.; Peetermans, W.E. and Boekhout, T., 2005. Zoonotic transmission of Cryptococcus neoformans from a magpie to an immunocompetent patient. Journal of Internal Medicine. Vol. 257, pp: 385-388.
8
Lugarini, C.; Goebel, C.S.; Condas, L.A.Z.; Muro, M.D.; de Farias, M.R.; Ferreira, F.M. and Vainstein, M.H., 2008. Cryptococcus neoformans Isolated from Passerine and Psittacine bird excreta in the state of Paraná, Brazil. Mycopathologia. Vol. 166, No. 2, pp: 61-69.
9
Lugarini, C.; Condas, L.A.Z.; Soresini, G. and Montiani-Ferreira, F., 2008. Screening of antigenemia and isolation of Cryptococcus neoformans and C. gattii from cloaca and crop of birds in the state of Paraná, Brazil, Pesq. Vet. Bras. Vol. 28, No. 7, pp: 341-344.
10
Malik, R.; Krockenberger, M.B.; Cross, G.; Doneleyy, R.; Madillz, D.N.; Black, D.; Mcwhirter, P.; Rozenwax, A.; Rose, K.; Alleyyy, M.; Forshawzz, D.; Russell-Brown, I.; Johnstoneyy, A.C.; Martin, P.; O’brien, C.R. and Love, D.N., 2003. Avian cryptococcosis. Medical Mycology. Vol. 41, pp: 115-124.
11
Nnadi, N.E.; Enweani, I.B.; Cogliati,M.; Ayanbimpe,G.M.; Okolo,M.O.; Kim, E.; Sabitu,M.Z.; Criseo, G.; Romeo,O. and Scordino,F., 2016. Molecular characterization of environmental Cryptococcus neoformans VNII isolates in Jos, Plateau State, Nigeria. Journal de mycologie medicale. Vol. 26, No. 4, pp: 306-311.
12
Nosanchuk, J.D.; Shoham, S.; Fries, B.C.; Shapiro, Levitz, D.S.; Levitz, S.M. and Casadevall, A., 2000. Evidence of zoonotic transmission of Cryptococcus neoformans from a pet cockatoo to an immunocompromised patient. Ann Intern Med. Vol. 132, No. 3, pp: 205-208.
13
Pereira, J.R.; Campos, F.L.; de Abreu, D.P.B. and de Assis Baroni, F., 2014. Cryptococcus neoformans e C. gattii isolados de excretas de aves comercializadas em lojas de animais do município do Rio de Janeiro. RJ, Rev. Bras. Med. Vet. Vol. 36, No. 1, pp: 90-94.
14
Quinn, P.J.; Markey, B.K.; Leonard, F.C.; Hartigan, P.; Fanning, S. and Fitzpatrick, E.S., 2011. Veterinary microbiology and microbial disease. John Wiley & Sons.
15
Rabin, K.; Stoller, J.K.; Honari, G.; Procop, G.W. and Gordon, S.M., 2004. Pneumonia Due to Cryptococcus neoformans in a Patient Receiving Infliximab: Possible Zoonotic Transmission from a Pet Cockatiel, Respir Care. Vol. 49, No. 6, pp: 606-608.
16
Raimondi, A.; Ticozzi, R.; Sala, G. and Bellotti, M.G., 2007. Genotype-based differentiation of the Cryptococcus neoformans serotypes by combined PCR-RFLP analysis of the capsule-associated genes CAP10 and CAP 59. Med Mycol. Vol. 45, pp: 491-501.
17
Raso, T.F.; Werther, K.; Miranda, E.T. And Mendes Giannini, M.J.S., 2004. Cryptococcosis outbreak in psittacine birds in Brazil. Med Mycol. Vol. 42, No. 4, pp: 355-362.
18
Springer, D.J.; Billmyre, R.B.; Filler, E.E.; Voelz, K.; Pursall, R.; Mieczkowski, P.A.; Larsen, R.A.; Dietrich, F.S.; May, R.C.; Filler, S.G. and Heitmanand, J., 2014. Cryptococcus gattii VGIII isolates causing infections in HIV/AIDS patients in Southern California: identification of the local environmental source as arboreal. PLoS Pathogens. Vol. 10, No. 8, pp: e1004285.
19
Tay, S.T.; Chai, H.C.; Na, S.L.; Hamimah, H.; Rohani, M.Y. and Soo-Hoo, T.S., 2005. The isolation, characterization and antifungal susceptibilities of Cryptococcus neoformans from bird excreta in Klang Valley, Malaysia. Mycopathologia. Vol. 159, pp: 509-513.
20
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثرات سطوح مختلف اسانس پونه و پروبیوتیک حاوی باسیلوس کوآگولانس بر عملکرد، خصوصیات لاشه و کیفیت گوشت جوجههای گوشتی
این پژوهش به منظور ارزیابی تأثیر سطوح مختلف اسانس پونه و پروبیوتیک (باسیلوس کوآگولانس) بر عملکرد، خصوصیات لاشه و کیفیت گوشت جوجه های گوشتی انجام شد. این آزمایش با 240 قطعه جوجه گوشتی یک روزه سویه راس 308 در قالب طرح کاملاً تصادفی به روش فاکتوریل 2×3 شامل سه سطح اسانس پونه (صفر، 100 و 200 میلی گرم در کیلوگرم) و دو سطح پروبیوتیک (صفر و 200 میلی گرم در کیلوگرم) با 4 تکرار و 10 قطعه جوجه در هر تکرار انجام شد. اثرات متقابل اسانس پونه و پروبیوتیک نشان داد که افزایش وزن بدن و ضریب تبدیل خوراک در جوجه های تغذیه شده با جیره حاوی پروبیوتیک در مقایسه با سایر تیمارها به جز جوجه های تغذیه شده با جیره حاوی100 میلی گرم اسانس پونه به ترتیب بیش تر و کم تر بود (0/05>P). اثرات اصلی و متقابل اسانس پونه و پروبیوتیک بر مصرف خوراک معنی دار نبود. اثرات متقابل بر وزن نسبی سینه معنی دار بود و بیش ترین وزن نسبی سینه مربوط به جوجه های تغذیه شده با جیره حاوی پروبیوتیک بود. هم چنین کم ترین میزان مالون دی آلدئید و افت در نتیجه پخت و بیش ترین میزان ظرفیت نگه داری آب مربوط به جوجه های تغذیه شده با جیره حاوی 100 میلی گرم اسانس پونه به همراه پروبیوتیک بود (0/05>P). به طورکلی، افزودن اسانس پونه (100 میلی گرم در کیلوگرم) به همراه پروبیوتیک به جیره جوجه های گوشتی بدون تاثیر بر عملکرد سبب بهبود کیفیت گوشت شد.
http://www.aejournal.ir/article_133201_dc274574c66f4fd04904fc218514be64.pdf
2021-04-21
163
172
10.22034/aej.2021.133201
اسانس پونه
باسیلوس کوآگولانس
پروبیوتیک
جوجههای گوشتی
عملکرد
الهام
حسنی سرخانی
hasanielham1395@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهید باهنر کرمان ، کرمان، ایران
AUTHOR
محسن
افشارمنش
mafshar@uk.ac.ir
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهید باهنر کرمان ، کرمان، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد
سالار معینی
salarmoini@uk.ac.ir
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهید باهنر کرمان ، کرمان، ایران
AUTHOR
هادی
ابراهیم نژاد
ebrahimnejad@uk.ac.ir
4
گروه بهداشت و مواد غذایی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید باهنر کرمان ، کرمان، ایران
AUTHOR
محمد
خواجه بمی
mkhaje@agr.uk.ac.ir
5
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه شهید باهنر کرمان ، کرمان، ایران
AUTHOR
جویا، م.؛ عشای ریزاده، ا. و دستار، ب.، 1399. تاثیر میکروجلبک اسپیرولینا و پروبیوتیک باسیلوس سوبتیلیس بر خصوصیات لاشه، مورفولوژی روده و فراسنجه های خون جوجه های گوشتی. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 12، شماره 1، صفحات 87 تا 94.
1
حاجی پور ده بالایی، ش.؛ افشارمنش، م. و سامی، م.، 1394. تأثیر اسانس آویشن، پونه کوهی و مخلوط آنها بر کیفیت گوشت بلدرچین در مقایسه با آنتیبیوتیک ویرجینیامایسین. بهداشت مواد غذایی. دوره 4، شماره 20، صفحات 45 تا 54.
2
حسینی، س.م.؛ موسوی، س.ن. و حسینی، س.ع.،1398. اثرات فرم خوراک، پروبیوتیک و آنزیم در جیره های بر پایه تریتیکاله بر عملکرد، جمعیت میکروبی، ویسکوزیته، pH محتویات هضمی و ریخت شناسی روده جوجههای گوشتی. علوم دامی (پژوهش و سازندگی). دوره 32، شماره 123، صفحات 271 تا 284.
3
زرقی، ح.؛ زکی زاده، س.؛ ابراهیمی متین، ع. و صلواتی، م.، 1398. اثر افزودن سطوح مختلف پودر برگ پونه کوهی (.Origanum vulgare L) به جیره بر پایه گندم بر عملکرد، پاسخ ایمنی و متابولیت های خون جوجه های گوشتی. علوم دامی (پژوهش و سازندگی). دوره 32، شماره 122، صفحات 29 تا 44.
4
صالحی، ا.؛ بهادران، ش.؛ فلاح مهرجردی، ع. و محبی، ع.، 1394. اثر آویشن شیرازی در جیره بر بازده رشد و میزان اکسیداسیون لاشه در جوجه های گوشتی. مجله دامپزشکی ایران. دوره 11، شماره 4، صفحات 42 تا 51.
5
طلا زاده، ف. و میاحی، م.، 1396. تاثیر پروبیوتیک حاویلاکتوباسیلوس، استرپتوکوکوس و بیفیدوباکتریوم بر ضریب تبدیل غذایی و لیپیدهای خون در جوجه های گوشتی. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 1، صفحات 95 تا 98.
6
Abbasvali, M.; Shahram Shekarforoush, S.; Aminlari, M. and Ebrahimnejad, H., 2012. Effects of Medium‐Voltage Electrical Stimulation on Postmortem Changes in Fat‐Tailed Sheep. Journal of Food Science. Vol. 77, pp: 47-53.
7
Abedini, A.; Hassanabadi, A.; Afzali, N. and Kermanshahi, H., 2017. The effect of different dietary levels of Pennyroyal (Mentha Pulegium L.), probiotic and antibiotic on performance, carcass characteristics and, sellected nutrients digestibility in broiler chickens. Archives of Medical Laboratory Sciences. Vol. 3, pp: 15-22.
8
Alex, T.H.; Shu-Yuaan, L.; Tsung-Yu, Y.; Chun-Kuang, C.; Hsun-Cheng, L.; Jin-Jenn, L.; Bo, W.; Shiyi, C. and Tu-Fa, L., 2012. Effects of Bacillus coagulans ATCC 7050 on growth performance, intestinal morphology, and microflora composition in broiler chickens. Animal Production Science. Vol. 52, pp: 874-879.
9
Al-Hijazeen, M.; Mendonca, A.; Lee, E.J. and Ahn, D.U., 2018. Effect of oregano oil and tannic acid combinations on the quality and sensory characteristics of cooked chicken meat.Poultry Science. Vol. 97, pp: 676-683.
10
Bertram, H.C.; Andersen, H.J.; Karlsson, A.H.; Horn, P.; Hedegaard, J.; Nørgaard, L. and Engelsen, S.B., 2003. Prediction of technological quality (cooking loss and Napole Yield) of pork based on fresh meat characteristics. Meat Science. Vol. 65, pp: 707-712.
11
Botsoglou, N.A.; Florou-Paneri, P.; Christaki, E.; Fletouris, D.J. and Spais, A.B., 2002. Effect of dietary oregano essential oil on performance of chickens and on iron-induced lipid oxidation of breast, thigh and abdominal fat tissues. British Poultry Science. Vol. 43, pp: 223-230.
12
Boulianne, M. and King, A.J., 1998. Meat color and biochemical characteristics of unaccepted dark-colored broiler chicken carcasses. Food Science. Vol. 63, pp: 759-762.
13
Castellini, C.; Mugnai, C. and Dal Bosco, A., 2002. Effect of organic production system on broiler carcass and meat quality. Meat science. Vol. 60, pp: 219-225.
14
Chalchat, J.C.; Gorunovlc, M.S.; Maksimovlc, Z.A. and Petrovlc, S.D., 2000. Essential oil of wild growing Mentha pulegium L from Yugoslavia. Journal of Essential Oil Research. Vol. 12, pp: 598-600.
15
Cheng, J.H., 2016. Lipid Oxidation in Meat. Journal of Nutrition and Food Sciences. Vol. 6, pp: 492.
16
Christensen, L.B., 2003. Drip loss sampling in porcine m. longissimus dorsi. Meat Science. Vol. 63, pp: 469-477.
17
De Clerck, E.; Rodriguez-Diaz, M.; Forsyth, G.; Lebbe, L.; Logan, N. A. and DeVos, P., 2004. Polyphasic characterization of Bacillus coagulans strains, illustrating heterogeneity within this species, and emended description of the species. Systematic and Applied Microbiology. Vol. 27, pp: 50-60.
18
Dunne, P.G.; Monahan, F.J.; O’Mara, F.P. and Moloney, A.P., 2009. Colour of bovine subcutaneous adipose tissue: A review of contributory factors, associations with carcass and meat quality and its potential utility in authentication of dietary history. Meat Science. Vol. 81, pp: 28-45.
19
Dwivedi, S.; Vasavada, M.N. and Cornforth, D., 2006. Evaluation of Antioxidant Effects and Sensory Attributes of Chinese 5‐Spice Ingredients in Cooked Ground Beef. Journal of Food Science. Vol. 71, pp: 12-17.
20
Goo, D.; Kim, J.H.; Park, G.H.; Reyes, D.; Badillo, J. and Kil, D.Y., 2019. Effect of Heat Stress and Stocking Density on Growth Performance, Breast Meat Quality, and Intestinal Barrier Function in Broiler Chickens. Animals. Vol. 9, pp: 107.
21
Hazrati, S.; Rezaeipour, V. and Asadzadeh, S., 2019. Effects of phytogenic feed additives, probiotic and mannan oligosaccharides on performance, blood metabolites, meat quality, intestinal morphology, and microbial population of Japanese quail. British Poultry Science. Vol. 61, pp: 1-8.
22
Hedayati, M. and Manafi, M., 2018. Evaluation of Anherbal Compound, a Commercial Probiotic, and an Antibiotic Growth Promoter on the Performance, Intestinal Bacterial Population, Antibody Titers, and Morphology of the Jejunum and Ileum of broilers. Brazilian Journal of Poultry Science. Vol. 20, pp: 305-316.
23
Hernandez, F.; Madrid, J.; Garcia, V.; Orengo, J. and Megias, M.D., 2004. Influence of two plantsextracts on broiler performance, digestibility and digestive organ size. Poultry Science. Vol. 83, pp: 169-174.
24
Hong, H.A. and Cutting, S.M., 2005. The use of bacterial spore formers as probiotics. FEMS Microbiology Reviews. Vol. 29, pp: 813-835.
25
Huff-Lonergan, E. and Lonergan, S.M., 2005. Mechanisms of water-holding capacity of meat: The role of postmortem biochemical and structural changes. Meat Science. Vol. 71, pp: 194-204.
26
Hwang, K.E.; Kim, H.W.; Choi, Y.S.; Lee, S.Y.; Yeo, E.J.; Ham, Y.K.; Choi, S.M.; Lee, M.A. and Kim, C.J., 2013. Evaluation of the antioxidant effect of ganghwayakssuk (Artemisia princeps Pamp.) extract alone and in combination with ascorbic acid in raw chicken patties. Poultry Science. Vol. 92, pp: 3244-3250.
27
Hyronimus, B.; Le Marrec, C.; Sassi, A.H. and Deschamps, A., 2000. Acid and bile tolerance of spore forming lactic acid bacteria. International journal of food microbiology. Vol. 61, pp: 193-197.
28
Jang, A.; Liu, X.D.; Shin, M.H.; Lee, BD.; Lee, SK.; Lee, J.H. and Jo, C., 2008. Antioxidative potential of raw breast meat from broiler chicks fed a dietary medicinal herb extract mix. Poultry Science. Vol. 87, pp: 2382-2389.
29
Kamatou, G.P.P.; Makunga, N.P.; Ramogola, W.P.N. and Viljoen, A.M., 2008. South African Salvia species: a review of biological activities and phytochemistry. Journal of Ethnopharmacology. Vol. 119, pp: 664-672.
30
Khajeh Bami, M.; Afsharmanesh, M. and Ebrahimnejad, H., 2019. Effect of Dietary Bacillus coagulans and Different Forms of Zinc on Performance, Intestinal Microbiota, Carcass and Meat Quality of Broiler Chickens. Probiotics and Antimicrobial Proteins.
31
Lambert, R.J.W.; Skandamis, P.N.; Coote, P.J. and Nychas, G.J., 2001. A study of the minimum inhibitory concentration and mode of action of oregano essential oil, thymol and carvacrol. Journal of Applied Microbiology. Vol. 91, pp: 453-462.
32
Mirzaei-Aghsaghali, A.; Syadati, S.A. and Fathi, H., 2012. Some of thyme (Thymus vulgaris) properties in ruminant's nutrition. Annals of Biology Researches. Vol. 3, pp: 1191-1195.
33
Mountzouris, K.C.; Tsitrsikos, P.; Palamidi, I.; Arvaniti, A.; Mohnl, M.; Schatzmayr, G. and Fegeros, K., 2010. Effects of probiotic inclusion levels in broiler nutrition on growth performance, nutrient digestibility, plasma immunoglobulins, and cecal microflora composition. Poultry Science. Vol. 89, pp: 58-67.
34
Nasehi, B.; Chaji, M.; Ghodsi, M. and Puranian, M., 2015. Effect of diet containing probiotic on the properties of Japanese quail meat during the storage time. Iranian Journal of Nutrition Sciences & Food Technology. Vol. 9, pp: 77-86.
35
Pearson, A.M., 2013. Quality attributes and their measurement in meat, poultry and fish products (Vol. 9). Springer.
36
Piray, A.H.; Kermanshahi, H.; Tahmasbi, A.M. and Bahrampour, J., 2007. Effects of cecal cultures and Aspergillus meal prebiotic (fermacto) on growth performance and organ weights of broiler chickens. Inernational Journal of Poultry Science. Vol. 6, pp: 340-344.
37
Raeisi, M.; Safamehr, A.; Khodaei Ashan, S. and Habibi, R., 2015. Thyme (Thymus vulgaris L.) and Oregano (Oreganum vulgare L.) essential oils for broilers: effect on performance, antioxidant indices and blood biochemical parameters. Animal Science Journal (Pajouhesh & Sazandegi). Vol. 105, pp: 103-120.
38
Ri, C.S.; Jiang, X.R.; Kim, M.H.; Wang, J.; Zhang, H.J.; Wu, S.G.; Bontempo, V. and Qi, G.H., 2017. Effects of dietary oregano powder supplementation on the growth performance, antioxidant status and meat quality of broiler chicks. Italian Journal of Animal Science. Vol. 16, pp: 246-252.
39
Vahdatpour, T.; Nikpiran, H.; Babazadeh, D.; Vahdatpour, S. and Jafargholipour, M.A., 2011. Effects of Protexin®, Fermacto® and combination of them on blood enzymes and performance of Japanese quails (Coturnix Japonica). Annals of Biological Researches. Vol. 2, pp: 283-291.
40
Velasco, V. and Williams, P., 2011. Improving meat quality through natural antioxidants. Canadian Journal of Agricultural Research. Vol. 72, pp: 313-322.
41
Warris, P. D., 2000. Meat Science. An introductory text. New York: CABI Publishing. Inc.
42
Yang, Y.; Iji, P.A. and Choct, M., 2009. Dietary modulation of gut microflora in broiler chickens: a review of the role of six kinds of alternatives to in-feed antibiotics. World Poultry Science. Vol. 65, pp:97-114.
43
Yanishlieva, N.V.; Marinova, E.M.; Gordon, M.H. and Reneva, V.G., 1999. Antioxidant activity and mechanism of action thymol and carvacrol intwo lipid systems. Food Chemistry. Vol. 64, pp: 59-66.
44
Zhou, X.; Wang, Y.; Gu, Q. and Li, W., 2010. Effect of dietary probiotic, Bacillus coagulans, on growth performance, chemical composition, and meat quality of Guangxi Yellow chicken. Poultry Science. Vol. 89, pp: 588-593.
45
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر استفاده از مخلوط عصاره گیاهان دارویی دارچین، نعناع و فلفل در دوره آغازین رشد، بر عملکرد، خصوصیات لاشه و فراسنجه های خونی جوجه های گوشتی
این آزمایش به منظور بررسی اثر استفاده از مخلوط عصاره گیاهان داروئی دارچین، نعناع و فلفل در دوره اول پرورش (10-1 روزگی) بر عملکرد، خصوصیات لاشه، وزن اندام های داخلی و فرانسجه های خونی جوجه های گوشتی به مدت 42 روز انجام شد. آزمایش در قالب طرح کاملاً تصادفی با 4 تیمار، 4 تکرار و 10 قطعه جوجه در هر تکرار انجام گردید. تیمارهای آزمایشی عبارتند از: (T1) جیره پایه، (T2) جیره پایه + 50 گرم در تن مخلوط عصاره گیاهان دارویی، (T3) جیره پایه + 100 گرم در تن مخلوط عصاره گیاهان دارویی و (T4) جیره پایه + 200 گرم در تن مخلوط عصاره گیاهان دارویی. مصرف مخلوط عصاره گیاهان داروئی باعث افزایش معنیدار وزن جوجه های گوشتی نسبت به تیمار شاهد شد (0/05>p ). نتایج نشان داد وزن نسبی سینه و بال به وسیله تیمارهای دریافت کننده 100 و 200 گرم و وزن نسبی پانکراس و قلب با استفاده از 100 گرم در تن مخلوط عصاره گیاهان داروئی به طور معنی داری افزایش یافت (0/05>p ). مصرف مخلوط عصاره گیاهان داروئی به شکل معنی داری سبب کاهش کلسترول و افزایش HDL سرم خون گردید (0/05>p ). گلوبولین، اوره، پروتئین، گلوکز و آلبومین سرم تحت تاثیر تیمارهای آزمایشی قرار نگرفتند (0/05<p ). با این حال 100 گرم در تن مخلوط عصاره گیاهان داروئی سبب افزایش معنی دار کراتینین شد (0/05>p ). بر اساس یافته های این مطالعه می توان نتیجه گرفت که استفاده از سطح 100 گرم در تن مخلوط عصاره گیاهان داروئی در دوره آغازین پرورش می تواند اثرات مفیدی بر عملکرد جوجه گوشتی، وزن اندام های داخلی و فراسنجه های خونی داشته باشد.
http://www.aejournal.ir/article_133223_ba8ae56d2142e433534b2f2570c14c58.pdf
2021-04-21
173
182
10.22034/aej.2021.133223
خصوصیات لاشه
جوجه گوشتی
عملکرد و گیاهان داروئی
زهرا
تهامی
tahami6690@yahoo.com
1
گروه تغذیه دام و طیور، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
سید محمد
حسینی
hosseini_sm@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه بیرجند ، بیرجند، ایران
AUTHOR
اربابیان، ه.؛ طهماسبی، ع.؛ وکیلی، ر. و زکی زاده، س.، 1390. اثر پودرفلفل قرمز و چربی برعملکرد و فراسنجه های خونی جوجه های گوشتی. نشریه پژوهش های علوم دامی ایران. جلد 3، شماره 4، صفحات 393 تا 405.
1
اسماعیلی، ح.ر.؛ وکیلی، ن.؛ افضلی، ن.؛ امیری، ا.؛ نعیمی پور، ح. و نصیمی، م.،1389. تأثیر استفاده از پودر دارچین در جیره بر عملکرد جوجه گوشتی. چهارمین کنگره علوم دامی ایران. دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی کرج، ایران.
2
باغبان کنعانی، پ.؛ دانشیار، م. و نجفی، ر.، 1395. تاثیر مکمل سازی پودر دارچین و زردچوبه بر عملکرد، صفات لاشه و برخی فراسنجه های خونی جوجه های گوشتی تحت تنش گرمایی. نشریه پژوهش های علوم دامی. جلد 26، شماره 1، صفحات 63 تا 75.
3
پیرمحمدی، ع.؛ دانشیار، م. و فرمومند، پ.، 1394. بررسی تاثیر پودر گیاهان آویشن و پونه بر عملکرد، خصوصیات لاشه و برخی فراسنجه های خونی جوجه های گوشتی تحت تنش گرمایی. مجله دامپزشکی ایران. جلد 11، شماره 2، صفحات 12 تا 25.
4
جادری، ن.؛ نوبخت، ع. و مهمان نواز، ی.، 1390. بررسی اثرهای استفاده از گیاهان دارویی مرزه (Satureja hortensis L.)، کاکوتی (Ziziphora tenuir L.) و گزنه (Urtica dioica L.) و مخلوط های مختلف آن ها بر عملکرد، کیفیت تخم مرغ و فراسنجه های خونی و ایمنی مرغ های تخم گذار. فصلنامه تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران. شماره 1، صفحات 11 تا 24.
5
جمالی، م.ر.؛ قربانی، م.ر.؛ طاطار، ا.؛ سالاری، س. و چاجی، م.، 1395. اثرات سطوح مختلف پودر خرفه بر جمعیت میکروبی، فراسنجه های بیوشیمیایی خون و خصوصیات استخوان درشت نی مرغان تخم گذار. مجله دامپزشکی ایران. دوره 4، شماره 12، صفحات 31 تا 42.
6
حاتمی، ح.؛ شکوری، م.؛ اسماعیل پور، ب. و بهروز، ر.، 1392. اثر گیاهان دارویی نعناع و ریحان در جیره بر عملکرد رشد، قابلیت هضم مواد مغذی، برخی فراسنجه های خونی و سیستم ایمنی جوجه های گوشتی. پایان نامه کارشناسی ارشد تغذیه دام. دانشگاه محقق اردبیلی.
7
حسینی کاریزعمر، س.م.؛ کریمی، ک. و خدایی مطلق، م.، 1393. مقایسه تأثیر تزریق عصاره شوید و لواستاتین بر کاهش غلظت کلسترول سرم خون، ماهیچه ها و کبد جوجه های گوشتی هایپرکلسترولمی شده. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 6، شماره 3، صفحات 203 تا 212.
8
خدایی مطلق، م.؛ کریمی، ک. و عبدالمحمدی، م.، 1393. تزریق عصاره سیر و لواستاتین بر غلظت کلسترول جوجه های گوشتی هایپرکلسترولمیک. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 7، شماره 3، صفحات 95 تا 102.
9
رضائی، م.؛ زارعی، ا.؛ افشار، م. و رحیمی، ا.، 1398. اثر سطوح مختلف رنگدانه های طبیعی گل جعفری و فلفل قرمز در جیره بر عملکرد و صفات کیفی تخم مرغ در مرغ های تخم گذار. علوم دامی (پژوهش و سازندگی). دوره 32، شماره 123، صفحات 233 تا 246.
10
سلطانی، ح. و نوبخت، ع.، 1394. اثرات استفاده از گیاهان دارویی پنیرک، گزنه، مرزه تابستانی و نعناع بر عملکرد، صفات لاشه، فراسنجه های بیوشیمیایی و سلول های ایمنی خون در جوجه های گوشتی. مجله تحقیقات دام و طیور. دوره 4، شماره 4، صفحات 13 تا 27.
11
شریفی، س.د.؛ حسنی خورسندی، س.؛ خادم، ع.ا. و صالحی، ع.ر.، 1390. اثرات چهار گیاه دارویی بر عملکرد و غلظت لیپیدهای سرم جوجه های گوشتی. فصلنامه گیاهان داروئی. دوره 1، شماره 8، صفحات 83 تا 91.
12
شلایی، م. و حسینی، س.م.، 1393. تأثیر سطوح مختلف بذر خرفه بر فراسنجه های خونی، مینرال های پلاسما، آنزیم های کبدی و برخی خصوصیات تخم مرغ در مرغان تخم گذار. تحقیقات تولیدات دامی. دوره 3، شماره 3، صفحه 45-55.
13
شیرزادگان، ک. و رضائی پور، و.، 1395. تأثیر سطوح متفاوت پودر دارچین بر عملکرد، فراسنجه های خونی و وزن اندام های داخلی جوجه های گوشتی. پژوهش های تولیدات دامی. دوره 7، شماره 13، صفحات 16 تا 23.
14
صفامهر, ع.؛ چاووشی، ف. و نوبخت، ع.، 1396. اثرات آویشن، مرزه با و بدون آنزیم بر عملکرد، فراسنجه های خونی و ایمنی در جوجه های گوشتی. پژوهش های تولیدات دامی. دوره 6، شماره 16، صفحات 70 تا 78.
15
فتحی، م.؛ نیک گو، ا. و مهری، م.، 1396. اثرات سطوح مختلف پودر دارچین بر عملکرد، وضعیت آنتی اکسیدانی، پایداری اکسیداتیو گوشت، فعالیت آنزیمی و برخی فراسنجه های خونی در جوجه های گوشتی. پژوهش های تولیدات دامی. شماره 17، صفحات 18 تا 25.
16
محیطی اصلی، م.؛ حسینی، س.ع.؛ میمندی پور، ا. و مهدوی، ع.، 1390. گیاهان داروئی در تغذیه دام و طیور. موسسه تحقیقات علم دام کشور. 238 صفحه.
17
مداحیان، ع.، 1392. بررسی تاثیر سطوح مختلف پودر فلفل قرمز بر رنگ زرده تخم مرغ و عملکرد مرغ های تخم گذار تجاری نژاد لگهورن. اولین ملی الکترونیکی سراسری کشاورزی و منابع طبیعی پایدار. موسسه آموزش عالی مهرآوند.
18
ملائی نژاد، م.؛ اسماعیلی پور، ا.ع.؛ میرمحمودی، ر. و مظهری، م.، 1396. اثر سطوح مختلف پودر پونه کوهی و دارچین بر عملکرد، متابولیت های خونی و فعالیت آنزیم گلوتاتیون پروکسیداز خون جوجه های گوشتی تحت تنش گرمایی. نشریه علوم دامی ایران (پژوهش و سازندگی). شماره 115، صفحات 221 تا 232.
19
مولودی، ی. و دانشیار، م.، 1396. اثرات اسانس گیاهان نعناع فلفلی و رزماری برعملکرد، وزن اندام های داخلی و برخی فراسنجه های خونی بلدرچین های ژاپنی. دوماهنامه تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران. جلد 33، شماره 6، صفحات 915 تا 927.
20
مهدی خانی، م. و آقازاده، ع، م.، 1394. تأثیر استفاده از ترکیب تجاری عصاره گیاهان دارویی و عصاره گیاهی آویشن و نعناع به عنوان جایگزین آنتی بیوتیک های محرک رشد بر عملکرد جوجه های گوشتی نر سویه راس. پایان نامه کارشناسی ارشد در رشته تغذیه طیور. دانشگاه ارومیه.
21
نجفی، پ.م.؛ ترکی، و. و مدرسی، م.، 1387. بررسی تأثیر افزودن روغن های اسانسی آویشن، دارچین و میخک به جیره های غذایی بر عملکرد جوجه های گوشتی. مجموعه مقالات همایش ملی فناوری های نوین در کشاورزی و منابع طبیعی. صفحات 1581 تا 1587.
22
نوبخت، ع.؛ آذرفر، س.؛ مهمان نواز، ی. و قلعه نوعی، م.ر.، 1394. اثرات استفاده از گیاهان دارویی پونه (.Mentha plugium L) و آویشن (.Thymus vulgaris L) بر عملکرد و متابولیت های خون در بلدرچین های تخم گذار. نشریه علوم دامی ایران (پژوهش و سازندگی). دوره 28، شماره 109، صفحات 3 تا 14.
23
ولی زاده، ر.، 1395. اثرات سطوح مختلف پودر زنجبیل و فلفل قرمز در جیره بر پایه گندم بر عملکرد، کیفیت تخم مرغ، پاسخ ایمنی هومورال و برخی از فراسنجه های خونی مرغ های تخم گذار. پایان نامه کارشناسی ارشد علوم دامی. دانشگاه تبریز.
24
Alcicek, A.; Zkurt, M. and Cabuk, M., 2003. The effect of an essential oil combination derived from selected herbs growing wild in turkey on broiler performance. South Africa Journal of Animal Science. Vol. 23, No. 2, pp: 89-94.
25
Al-Kassie, G.A.M. and Al-Nasrawi, M.A.M., 2011. The effects of using hot red pepper a diet supplement on some performance traits in broiler. Pakistan Journal of Nutrition. Vol. 10, pp: 842-845.
26
Alp, M.; Midilli, M.; Kocabagl, N.; Yilmaz, H.; Turan, N.; Gargil, A. and Acar, N., 2012. The effects of dietary oregano essential oil on live performance, carcass yield serum immunoglobulin g level, and oocyst count in broilers. Journal of Applied Poultry Research. Vol. 21, pp: 630-636.
27
Amerah, A.M.; Mathis, G. and Hofacre, C.L., 2012. Effect of xylanase and a blend of essential oils on performance and Salmonella colonization of broiler chickens challenged with Salmonella Heidelberg. Poultry Science. Vol. 91, pp: 943-947.
28
Burt, S.A.; Vlielander, R.; Haagsman, H.P. and Veldhuizen, E.J., 2005. Increase in activity of essential oil components carvacrol and thymol against Escherichia coli O157:H7 by addition of food stabilizers. Journal of Food Protection. Vol. 68, No. 5, pp: 919-926.
29
Cabuk, M.; Bozkurt, M.; Alcicek, A.; Akbas, Y. and Kucuyilmaz. K., 2006. Effect of herbal essential oil mixture on growth and internal organ weight of broilers from young and old breeder flocks. South. African Journal of Animal Science. Vol. 36, pp: 135-141.
30
Caterina, M.J.; Schumacher, M.A.; Tominaga, M.; Rosen, T.A.; Levine, D.; Ciftci, M.; Simsek, U.G.; Yuce, A.; Yilmaz, O. and Dalkilic, B., 2010. Effects ofdietary antibiotic and Cinnamon oil supplementation on antioxidant enzymeactivities, cholesterol levels and fatty acid compositions of serum and meat inbroiler chickens. ActaVeterinaria Brno. Vol. 79, pp: 33-40.
31
Deriu, A.; Zanetti, S.; Sechi, L.A.; Marongiu, B.; Piras, A.; Porcedda, S. and Tuveri, E., 2008. Antimicrobial activity of InulaheleniumL. essential oil against Gram positive and Gram negative bacteria and Candida spp. IJAA.
32
Dorman, H.J.D. and Deans, S.G., 2000. Antimicrobial agents from plants: antibacterial activity of plant volatile oils. Journal of Applied Microbiology. Vol. 88, pp: 308-316.
33
Durrani, F.R.; Sultan, A.; Latif-Marri, M.; Chand, N. and Durrani, Z., 2007. Effect of wild mint infusion on the overall performance of broiler chicks. Pakistan Journal Biology Science. Vol. 10, No. 7, pp: 1130-1133.
34
Eldeeb, M.; Metwally, M.A. and Galal, A.E., 2006. The impact of botanical extract, capsicum (Capsicum frutescence l), oil supplementation and their interactions on the productive performance of broiler chicks. World's Poultry Science. pp: 243-247.
35
Eltazi, S.M.A., 2014. Effect of using cinnamon powder as natural feed additive on performance and carcass quality of broiler chicks. International Journal of Innovations and Research. Vol. 2, No. 3, pp: 1-8.
36
Farrell, D.J., 1978. Efficiency of utilisation by growing chickens of the energy of dietary fat and oil. Poultry Science. Vol. 19, No. 1, pp: 105-109.
37
Garcıa, V.; Catala-Gregori, P.; Hernandez, F.; Megıas, M, D. and Madrid, J., 2007. Effect of Formic Acid and Plant Extracts on Growth, Nutrient Digestibility, Intestine Mucosa Morphology, and Meat Yield of Broilers. Journal of Applied Poultry Research. Vol. 16, pp: 555-562.
38
Gill, C., 2001. Safe and sustainable feed ingredients. Feed International. Vol. 22, pp: 40-45.
39
Golian, A.; Akbarian, A. and Saleh, H., 1390. Medician plants in animal nutritions (natural compounds to improve and efficiency gastrointestinal function). Ferdowsi university of mashhad publications. First edition.
40
Hermes, I.H.; Attia, F.M.; Ibrahim, M.K.A.; EL-nesr, S. and Hafez, S.I., 2011. Physiological Responses of Broiler Chickens to Dietary Different Forms and Levels of Nigella Sativa L., During Egyptian Summer Season. Journal of Agricultural and Veterinary Sciences. Vol. 4, pp: 17-35.
41
Hernandez, F.; Madrid, J.; Garcia, V.; Orengo, J. and Megias, M.D., 2004. Influence of two plant extracts on broiler performance, digestibility and digestive organ size. Poultry Science. Vol. 83, pp: 169-174.
42
Jamroz, D. and Kamel, C., 2002. Plant extracts on immunity, health, and performance. Journal of Animal Science. Vol. 80, pp: 41.
43
Jang, I.S.; Ko, Y.H.; Kang, S.Y. and Lee, C.Y., 2007. Effect of a commercial essential oil on growth performance, digestive enzyme activity and intestinal micro flora population in broiler chickens. Animal Feed Science and Technology. Vol. 134, pp: 304-315.
44
Koochacsaraie, R.R.; Irani, M. and Gharavysi, S.H., 2011. The effect of cinnamon powder feeding onsome blood metabolites in broiler chicks. Journal of Brazilian Poultry Science. Vol. 13, pp: 197-201.
45
Langhout, P., 2000. New additives for broiler chickens. World Poultry Elsevier. Vol. 16, pp: 22-27.
46
Lasgti, M., 1995. History of Agriculture and Livestock in Iran (First Volume). Tehran. Amir kabir Publication Institute.
47
Lee, K.W.; Everts, H. and Beyen, A.C., 2003. Dietary carvacrol lowers body gain but improves feed conversion infemale broiler chickens. Journal of Applied Poultry research. Vol. 12, pp: 394-399.
48
Lee, K.W.; Everts, H.; Kappert, H.J.; Frehner, M.; Losa, R. and Beynen, A.C., 2003. Effects of dietary essential oil components on growth performance, digestive enzymes and lipid metabolism in female broiler chickens. British Poultry Science. Vol. 44, pp: 450-457.
49
Mehmet, C.; Simsek, U.G.; Yuce, A.; Yilmaz, O. and Dalkilic. B., 2010. Effects of dietary antibiotic and cinnamon oil supplementation on antioxidant enzyme activities, cholesterol levels and fatty acid compositions of serum and meat in broiler chickens. Acta VeterinariaBrunensis. Vol. 79, pp: 33-40.
50
Mellor, S., 2000. Antibiotics are not the only growth promoters. World Poultry Science Journal. Vol. 16, pp: 14-15.
51
Nobakht, A.; olimanzadeh, S. and Pishjangh, J., 2011. Effects of Varying Levels of Nettle (Urtica dioica L.), Pennyroyal (Mentha pulegium L.) Medicinal Plants and Enzyme on Performance and Egg Traits of Laying Hens. Global Veterinaria. Vol. 7, No. 5, pp: 491-496.
52
Rehani Mohassess, A., 2011. Effect of different levels of Mentha and Ajowan on performance and carcass characteristics of broilers. South African. Journal of Animal Science. Vol. 16, pp: 12-18.
53
Sadeghi, G. and Khaliqi-Ghara-Tape, F., 2008. Effect of Plant and Essential Oil on Performance of Broiler Chickens. 4th Iranian Animal Science Congress.
54
Solaiman, F.; El-Sohly, M.; Fathy, M. and El-Sakhawy, F., 2008. A comparative study of the essential oils from certain Mentha and Saliva species grown in Egypt. Egyptian journal of pharmaceutical sciences. Vol. 38, pp: 553-564.
55
Swennen, Q.; Janssens, G.P.; Decuypere, E. and Buyse, J., 2004. Effects of substitution between fat and protein on feed intake and its regulatory mechanisms in broiler chickens: energy and protein metabolism and diet-induced thermogenesis. Poultry Science. Vol. 83, No. 12, pp: 1997-2004.
56
Tahami, Z.; Hosseini, S.M. and Shalaei, M., 2016a. Study of carcass characteristics and relative weight of internal organs of broiler chickens Fed with a mixture of medicinal plants in the early period. 2 nd National Congress on the Development Agricultural Science and Natural Resource Gorgan.
57
Tahami, Z.; Hosseini, S.M. and Shalaei, M., 2018b. Effect of Use of Mixture of Herbal Extracts on Performance, Carcass Characteristics, Blood Serum Metabolites and Enzyme Activity of Broiler Chickens. Iranian Journal of Animal Science Research. Vol. 9, pp: 446-460.
58
Tannock, G.W.; Dashkevicz, M.P. and Feighner,S.D., 1989. Lactobacilli and bile salt hydrolase in the marine intestinal tract. Applied and Environmental Microbiology. Vol. 55, pp: 1848–1851.
59
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر برنامه های نوری مختلف برمولفه های رشد و ایمنی درجوجه های گوشتی
این آزمایش به منظوربررسی تاثیر برنامه های نوری مختلف برعملکرد رشد، سیستم ایمنی و اندام های داخلی جوجه های گوشتی انجام شد. 300 قطعه جوجه نر یک روزه راس 308 به سه گروه 100 تایی با پنج تکرار با میانگین وزن تقریبا یکسان تقسیم بندی شدند. جوجه های هر تیمار به طور تصادفی در سالنی مجزا در5 پن شامل 20 قطعه جوجه قرار گرفتند. در هر سه تیمار به جز برنامه نوری تمام شرایط مدیریتی یکسان بود و از 8 تا 42 روزگی ، تیمار 1 با یک ساعت تاریکی، تیمار2 با 8 ساعت تاریکی مداوم و تیمار 3 با 12 ساعت تاریکی مداوم پرورش داده شدند. در 35 روزگی 0/2 میلی لیترآنتی ژن علیه گلبول های قرمز گوسفندی از طریق وریدی به جوجه ها تزریق و در 42 روزگی از هر تکرار(پن) 4 جوجه به طریق کاملا تصادفی انتخاب و خونگیری جهت تعیین تیتر آنتی بادی علیه گلبول های قرمز گوسفندی انجام شد. سپس جوجه ها ذبح شده و وزن تیموس، طحال، کبد، قلب، چینه دان، سنگدان و ژژنوم توزین و طول ژژنوم اندازه گیری شد. تیتر آنتی بادی علیه گلبول های قرمز گوسفندی در جوجه های تیمار با 23 ساعت روشنایی: یک ساعت تاریکی کم ترین و در تیمار 12 ساعت روشنایی:12 ساعت تاریکی بیش ترین سطح را به خود اختصاص داد (0/01>p ). وزن اندام های داخلی در تیمار 23 ساعت روشنایی:1 ساعت تاریکی کم ترین و در تیمار12 ساعت روشنایی:12 ساعت تاریکی بیش ترین مقدار را به خود اختصاص داد. افزایش وزن بدن و ضریب تبدیل خوراک بین تیمارها در تمام دوره ها اختلاف معنی داری داشت و با افزایش ساعات تاریکی بهبود یافت (0/05>p ). براساس نتایج این آزمایش برنامه های نوری با ساعات تاریکی بیش تر موجب بهبود مولفه های رشد و ایمنی جوجه های گوشتی گردید.
http://www.aejournal.ir/article_130037_067e760f59081c5347020cf8e413b1c9.pdf
2021-04-21
183
188
10.22034/aej.2021.130037
جوجه گوشتی
برنامه نوری
سیستم ایمنی
اندام های داخلی
گلبول قرمز گوسفندی
بانو
یحیی زاده
b.yahyazadeh@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، واحد کاشمر، دانشگاه آزاد اسلامی، کاشمر، ایران
AUTHOR
رضا
وکیلی
rezavakili2010@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، واحد کاشمر، دانشگاه آزاد اسلامی، کاشمر، ایران
LEAD_AUTHOR
Abbas, A.O.; Gehad, A.E.; Hendricks, G.L.; Gharib, H.B.A. and Mashaly, M.M., 2007. The effect of lighting program and melatonin on the alleviation of the negative impact of heat stress on the immune response in broiler chickens. International J Poultry Sci. Vol. 6, pp: 651-660.
1
Blair, R.; Newberry, R.C. and Gardiner, E.E., 1993. Effects of lighting pattern and dietary tryptophan supplementation on growth and mortality in broilers. Poultry Science. Vol. 72, pp: 495-502.
2
Brennan, C.P.; Hendricks, G.L.; El-Sheikh, T.M. and Mashaly, M.M., 2002. Melatonin and the enhancement of immune responses in immature male chickens. Poultry Science.Vol. 81, pp: 371-375.
3
Buyse, J.; Kuhn, E.R. and Decuypere, E., 1996. The use of intermittent lighting for broiler production.1. Effects on male and female broiler performance, and on efficiency of dietary nitrogen retention. Poultry Science.Vol. 75, pp: 589-594.
4
Calvo, J.R.; El-Idrissi, M.R.; Pozo, D. and Guerrero, J.M., 1995. Immunomodulatory role of melatonin: specific binding sites in human and rodent lymphoid cells. Pineal Research. Vol. 18, p:119.
5
Campo, J.L. and Davila, S.G., 2002. Effect of photoperiod on heterophil to lymphocyte ratio and tonicimmobility duration of chickens. Poultry Science.Vol. 81, pp: 1637-1639.
6
Cave, N.A.G.; Bently, A.H. and Maclean, H., 1985. The effect of intermittent lighting on growth, feed: gain ratio and abdominal fat contact of broiler chicken of various genotype and sex. Poultry Science. Vol. 64, pp: 447-453.
7
Charles, R.G.; Robinson, F.E.; Hardin, R.T.; Yu., M.W.; Feedes, J. and Classen, H.L., 1992. Growth, body composition, and plasma and androgen concentration of male broiler chickens subjected to different regimens of photoperiod and light intensity. Poultry Science. Vol. 71, pp: 1595-1605.
8
Deep, A.; Schwean-Lardner, K.; Crowe, T.G.; Fancher, B.I. and Classen, H.L., 2010. Effect of light intensity on broiler production, processing characteristics, and welfare. Poultry Science. Vol. 89, pp: 2326-2333.
9
Demas, G.E. and Nelson, R.J., 1996. Photoperiod and temperature interact to affect immune parameters in adult male deer mice. J Biology Rhythms. Vol. 11, pp: 94-102.
10
Gordon, S.H., 1994. Effect of day length and increasing day length programs on broiler welfare and performance World’s Poultry Science Journal. Vol. 50, pp: 269-282.
11
Hosseini Fahreji, H. and Najafi, R. 2013.Effects of lighting programs on immune system and performance of broiler chickens. Veterinary Journal Pajouhesh & Sazandegi. Vol. 101, pp: 13-21.
12
Kliger, C.A.; Gehad, A.E.; Hulet, R.M.; Roush, W.B.; Lillehoj, H.S. and Mashaly, M.M., 2000. Effects of photoperiod and melatonin on lymphocyte activities in male broiler chickens. Poultry Science. Vol. 79, pp: 18-25.
13
Lerner, K.G.; Glick, B. and Mc duffie, F.C., 1971. Role of the bursa of faricius in IgG and IgM production in the chicken: Evidence for the role of a non Bursa site in the development of Humoral immunity. Journal of Immunology. Vol. 107, pp: 493-530.
14
Lewis, P.D.; Danisman, R. and Gous, R.M., 2009. Photoperiodic responses of broilers: I. Growth, feeding behaviour, breast yield, and testicular growth. British Poultry Science. Vol. 50, pp: 657-666.
15
Makram, A.; Galal, A.; Fathi, M.M. and El-Attar, A.H., 2010. Carcass Characteristics and immunocompetence Parametrs of Four Cammercial Broiler Strain Chickens under Summer Season of Egypet International Journal of Poultry Science. Vol. 9, No. 2, pp: 171-176.
16
Moore, C.B. and Siopes, T.D., 2000. Effects of lighting conditions and melatonin of lighting program and melatonin on the the alleviation of the negative impact of heat stress on the immune response in broiler chickens. Poultry Science. Vol. 6, pp: 651-660.
17
Newberry, R.C.; Hunt, J.R. and Gardiner, E.E., 1985. Effect of alternating lights and strain on roaster chicken performance and mortality due to sudden death syndrome. Candian Journal of Animal Science. Vol. 65, pp: 993-999.
18
Ohtani, S. and Tanaka, K., 1998. The effects of intermittent lighting on activity of broiler. The Journal of Poultry Science. Vol. 35, pp: 117-124.
19
Olanrewaju, H.A.; Thaxton, J.P.; Dozier, W.A.; Purswell, J.; Roush, W.B. and Branton, S.L., 2006.A review of lighting programs for broiler production. International Journal of Poultry Science. Vol. 5, No. 4, pp: 301-308.
20
Rahmani, M.; Karimi, T.A. and Vaez Tourshizi, R., 2012. Effect of optical program on cellular and neural immune responses of Arian broiler chicks. Iranian Journal of Animal Science. Vol. 3, No. 3, pp: 220-228.
21
Renden, J.A.; Bilgili, S.F. and Kincaid, S.A., 1993. Comparison of restricted and light program for male broiler performance and carcass yield. Poultry Science. Vol. 72, pp: 378-382.
22
SAS Institute. 1990. SAS/STAT® User's guide, release 6.03 edition. SAS Institute Inc., Cary, NC.
23
Shariatmadari, F. and Forever, A.S., 2007. Effect of food restriction in early ages and light program (intermittentnightly) on the performance of broiler chicks. Journal of Agricultural Sciences and Technology. Vol. 40, No. 2, pp: 363-374.
24
Van der Zipp, I., 1980. Genetic Analysis of the humoral immune response of white leghorn chicks. Poultry Science. Vol. 59, pp: 1363-1369.
25
Zaghari, M. and Taherkhani, R., 2007. Exposure in the Poultry (Translated) (First Edition). Tehran University Press. 139 p.
26
ORIGINAL_ARTICLE
اثر تجویز خوراکی عصاره گیاه خار مریم (سیلی مارین) بر فراسنجه های الکتروکاردیوگرام در اردک های نژاد پکین مسموم شده با نیترات سرب
سرب دومین فلز سنگین خطرناک است که به علت استفاده زیاد از این فلز در صنایع به طور گسترده در محیط انتشار یافته و از طریق آلودگی آب و مواد غذایی، انسان و حیوان را مسموم می کند. هدف از تحقیق حاضر، بررسی اثر عصاره دانه خارمریم بر پارامترهای الکتروکاردیوگرام در اردک های مسموم شده با سرب است. 90 قطعه اردک یک روزه نژاد پکین به 3 گروه 30 تایی تقسیم شدند که شامل گروه کنترل سالم، گروه کنترل مسموم (40 میلی گرم / کیلوگرم نیترات سرب در جیره غذایی)، گروه مسموم درمان (40 میلی گرم /کیلوگرم نیترات سرب و 300 میلی گرم / کیلوگرم عصاره گیاه در جیره غذایی) بودند. به منظور اندازه گیری ارتفاع امواج T ،S و R و فواصل ST ،RR ،QT و QRS و محورالکتریکی قلب در سنین 28 و 60 روزگی از تعداد 8 قطعه اردک در هر گروه نوار الکتروکاردیوگرام تهیه گردید. نتایج نشان داد تغییراتی در امواج R ،S ،T در گروه کنترل مسموم مشاهده گردید و ارتفاع این امواج در مقایسه با گروه کنترل سالم افزایش پیدا کرد که نتیجه هیپرتانسیون ناشی از سرب است. عصاره گیاه در گروه درمان مانع افزایش غیرطبیعی این امواج شد و کاهش ارتفاع در موج R اشتقاق III و موج T دراشتقاق های III و aVF در 60 روزگی از لحاظ آماری معنی دار بود. هم چنین فواصل QRS وQT در گروه کنترل مسموم افزایش یافت و عصاره گیاه به طور معنی داری مانع افزایش در فاصله QRS در اشتقاق II در 60 روزگی و فاصله QT در اشتقاق III در 28 روزگی و در اشتقاق aVF در 60 روزگی شد. بنابراین، عصاره دانه خارمریم موجب بهبود شاخص های الکتروکاردیوگرام قلب در اردک های مسموم شده توسط سرب می گردد.
http://www.aejournal.ir/article_130322_375b580cd1d344f72d22e4c065fd5421.pdf
2021-04-21
189
196
10.22034/aej.2021.130322
گیاه خارمریم
دانه
سرب
الکتروکاردیوگرافی
اردک نژاد پکین
حامد
زارعی
h.zarei@iautmu.ac.ir
1
گروه علوم پایه، واحد تهران مرکزی، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
سعید
مرادی
zarei1361@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، واحد گرمسار، دانشگاه آزاد اسلامی، گرمسار، ایران
AUTHOR
بخردی، ر.، 1383. گیاه درمانی نوین. کاشان. شرکت داروسازی باریج اسانس. صفحات 69 تا 247.
1
تشفام، م.؛ نوده، ح. و کرامتی، ک.، 1383. مقایسه امواج الکتروکاردیوگرام و محور الکتریکی قلب درجوجه های گوشتی مبتلا به آسیت تجربی با استفاده از مدل خوراکی 3T با جوجه های سالم. مجله دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران. شماره 58، صفحات 297 تا 300.
2
حسن پور، ح.؛ تشفام، م.؛ مدیرصانعی، ل. و عمادی، ح.، 1384. مقایسه امواج الکتروکاردیوگرام، محور الکتریکی قلب و اندیس قلبی (RV/TV) در جوجه های گوشتی مبتلا به آسیت تجربی با استفاده از سرما با جوجه های سالم. مجله دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران. جلد 60، صفحات 333 تا 337.
3
ضیایی، س.؛ فلاح حسینی، ح.؛ رجبیان، ط.؛ پورحسینی، ل.؛ نقدی بادی، ح. و رضازاده، ش.، 1383. بررسی حلال های مختلف در استخراج سیلی مارین از بذر گیاه خارمریم. فصلنامه گیاهان دارویی. سال 4، صفحات 1 تا 6.
4
DerMarderosian, A. and Louis, P., 2001. The review of natural products. 1st ed. Facts and Comparisons. St. pp: 405-409.
5
Dey, S.; Swarup, D. and Singh, G.R., 1993. Effect of experimental lead toxicity on cardiovascular function in calves. Vet Hum Toxicol. Vol. 35, pp: 501-503.
6
Kamil, K.A.; Kartasudjana, R.; Iskandar, S. and Latipudin, D., 2011. Effect of phytate in diet and lead in drinking water on blood mineral and growth of ducks. International Scientific Symposium-60 Years of Animal Science Higher Education in Moldova.
7
Kirby, Y.K. and Wideman, R.F.R., 1995. Molecular genetics analysis of loci affecting resistance or susceptibility to pulmonary hypertension syndrome. Poultry Sci. Vol. 74, No. 1, pp: 91.
8
Kober, T. and Cooper, G., 1976. Lead competitively inhibits calcium dependent synaptic transmission in the bullfrog sympathetic ganglion. Nature. Vol. 262, pp: 704-705.
9
Kopp, S.; Baker, J.; LS, D.A. and Hawley, P.L., 1978. Simultaneous recording of Hisbund le electrogram, electrocardiogram, and systolic tension from intact modified Langendorff rat heart preparations. I: effects of perfusion time, cadmium, and lead. Toxicol Appl Pharmacol. Vol. 46, pp: 475-487.
10
Kopp, S.J.; Perry, M.Jr.; Glonek, T.; Erlanger, M.; Perry, E.F. and Barany, M., 1980. Cardiac physiologic-metabolic changes after chronic low-level heavy metal feeding. Am J Physiol. Vol. 239, pp: H22-H30.
11
Lumeii, J.T., 1985. Clinico-pathologic aspects of lead poisoning of birds: A review. The Vet Quarterly. Vol. 7, No. 2, pp: 133-138.
12
Mortinez, A.; Jeffrey, S. and Odom, T.W., 1997. Electrocardiographic diagnosis of cardiomypathies in aves. Poult Avian Boil Rev. Vol. 8, pp: 9-20.
13
Myerburg, R., 1997. Sudden cardiac death in persons with normal (or near normal) hearts. Am J Cardiol. Vol. 79, pp: 3-9.
14
Myerson, R. and Eisenhauer, J., 1963. Atrio-ventricular conduction defects in lead poisoning. Am J Cardiol, Vol. 11, pp: 409-412.
15
Navas-Acien, A.; Guallar, E.; Silbergeld, E.K. and Rothenberg, S.J., 2007. Lead exposure and cardiovascular disease - A systematic review. Environ Health Perspect. Vol. 115, pp: 472-782.
16
Narayana, K. and Al-Bader, M., 2011. Ultrastructural and DNA damaging effects of lead nitrate in the liver. Exp &Tox Path. Vol. 63, pp: 43-51.
17
Nosratola, D. and Vaziri, K., 2008. Mechanisms of lead induced hypertension and cardiovascular disease. Am J Physiol Heart Circ Physiol. Vol. 295, pp: H454-H465.
18
Silbergeld, E.; Fales, J. and Goldberg, A., 1974. Evidence for a junctional effect of lead on neuromuscular function. Nature, Vol. 247, pp: 49-50.
19
Silver, W. and Rodriguez-Torres R., 1968. Electrocardiographic studies in children with lead poisoning. Pediatrics. Vol. 41, pp: 1124-1127.
20
Sunil, K.M.; Asok, M.; Nguyen, T.V. and Bharat, B.A., 1999. Silymarin suppresses TNF induced activation of NFKb, c-Jun N-Terminal Kinase, and Apoptosis. J Molecul Biol. Vol. 18, pp: 6800-6809.
21
Tuormaa, T.E., 1995. The adverse effects of lead. J Orthomol Med. Vol. 10, No. 3-4, pp: 149-164.
22
Read, J. and Williams, J., 1952. Lead myocarditis: report of a case. Am Heart J. Vol. 15, pp: 797-802.
23
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی ساختار و تنوع ژنتیکی کبرای خزری Naja oxiana (Eichwald, 1831) در ایران با استفاده از نشانگر میتوکندریایی سیتوکروم b
تبارشناسی و چگونگی تکامل کبرای خزری به عنوان شرقی ترین گونه از زیرجنس Naja دارای ابهامات زیادی است. هدف این مطالعه، بررسی تنوع و ساختار ژنتیکی و هم چنین ارتباطات تبارشناختی جمعیت های کبرای خزری در شمال شرق ایران، افغانستان و ترکمنستان بوده است. در این مطالعه 1107 جفت باز از قطعه ژن میتوکندریایی سیتوکروم b برای 54 نمونه از کبرای خزری مورد بررسی قرار گرفت. تحلیل تبارشناسی با استفاده از بهترین مدل تکاملی و رسم درخت بیزین و حداکثر درست نمایی و ارتباط بین هاپلوتایپ با استفاده از منطق پارسیمونی مورد بررسی قرار گرفت. بازسازی درخت تبارشناسی نشان داد که همه جمعیت های کبرای خزری در نواحی شمال شرقی ایران به همراه نمونه های کشورهای افغانستان و ترکمنستان متعلق به یک تبار جغرافیائی هستند. هم چنین، گونه Naja kaouthia به عنوان آرایه خواهری کبرای خزری شناسائی شد. تنوع هاپلوتیپی و تنوع نوکلئوتیدی ژن سیتوکروم b در نمونه های مورد بررسی به ترتیب برابر با 0/42 و 0/00058 محاسبه شد که نشان دهنده تنوع ژنتیکی به نسبت پایین در جمعیت کبرای خزری است. نتایج حاکی از گسترش اخیر و ناگهانی جمعیت های این گونه از مرزهای شمال شرقی کشور به سوی استان گلستان بوده است و حاکی از آن است که هنوز تمایز ژنتیکی معنی داری بین جمیعت های این گونه به وقوع نپیوسته و همه جمعیت های کبرای خزری ایران را می توان به عنوان یک واحد تکاملی در نظر گرفته و مورد حفاظت قرار داد.
http://www.aejournal.ir/article_133240_2ddc0eca32f3fbb622153a444cb68c8d.pdf
2021-04-21
197
206
10.22034/aej.2021.133240
کبرای خزری Naja oxiana
سیتوکروم بی
تنوع ژنتیکی
درخت تبارشناسی
شبکه هاپلوتیپی
المیرا
کاظمی
elmira.kj@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
محمد
کابلی
mkaboli@ut.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
نعمت اله
خراسانی
khorasan@ut.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
رجبی زاده، م.، 13۹۷. مارهای ایران. انتشارات ایران شناسی. 4۹5 صفحه.
1
شورابی، م.، 1393. بررسی تنوع ژنتیکی میان جمعیت های کفچه مار (Naja oxiana) در ایران با استفاده از نشانگر mtDNA، پایان نامه، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه تهران. 100 صفحه.
2
کابلی، م.، 1373. مشاهدات شخصی.
3
کرمی، پ. و شایسته، ک.، 1397 . بررسی آشیان بوم شناختی قوچ و میش در مناطق حفاظت شده لشگردر-گلپرآباد، الوند-چال خاتون راسوند و پلنگاب. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 10، شماره 4، صفحات 65 تا 74.
4
محسنی نژاد، م. و کرمی، پ.؛ 1399. کمی سازی توزیع و روند تغییرات آشیان اکولوژیک خرس قهوه ای. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 12، شماره 1، صفحات 1 تا 8.
5
محمودی، م.؛ ﻣﺤﻤﺪآﺑﺎدی، م. و آﻳﺖاﻟﻠﻬﻲ ﻣﻬﺮﺟﺮدی، ا.، 1396. ﺑﺮرﺳﻲ اﮔﺰون ﭼﻬﺎرم ژن ﻛﺎﭘﺎﻛﺎزﺋﻴﻦ ﮔﻮﺳﻔﻨﺪ ﻛﺮﻣﺎﻧﻲ ﺑﺎ ﺗﻜﻨﻴﻚ PCR-RFL . ﻣﺠﻠﻪ ﺑﻴﻮﺗﻜﻨﻮﻟﻮژی ﻛﺸﺎورزی. دوره 9، شماره3، صفحات 119 تا 128.
6
Avise, J.C., 2000. Phylogeography: the history and formation of species. Harvard university press. 285 p.
7
Burbrink, F.T., 2002. Phylogeographic analysis of the cornsnake (Elaphe guttata) complex as inferred from maximum likelihood and Bayesian analyses. Molecular phylogenetics and evolution. Vol. 53, No. 2, pp: 465-476.
8
Burbrink, F.T.; Lawson, R. and Slowinski, J.B., 2000. Mitochondrial DNA phylogeography of the polytypic North American rat snake (Elaphe obsoleta): a critique of the subspecies concept. Evolution. Vol. 54, pp: 2107-2118.
9
Bolfíková, B.C.; Eliásová, K.; Loudová, M.; Krytufek, B.; Lymberakis, P.; Sándor, A.D. and Hulva, P., 2017. Glacial allopatry vs. postglacial parapatry and peripatry: the case of hedgehogs. Peer J. Vol. 5, pp: e3163.
10
Darriba, D.; Taboada, G.L.; Doallo, R. and Posada, D., 2012. jModelTest 2: more models, new heuristics and parallel computing. Nature Methods. Vol. 9, pp: 772.
11
Darvish, J. and Rastegar-Pouyani, E., 2012. Biodiversity conservation of reptiles and mammals in the Khorasan Provinces, northeast of Iran. Progress in Biological Sciences. Vol. 2, pp: 95-10.
12
Excoffier, L., 2004. Patterns of DNA sequence diversity and genetic structure after a range expansion: lessons from the infinite-island model. Molecular Ecology. Vol. 13, pp: 853-864.
13
Excoffier, L.; Laval, G. and Schneider, S., 2005. Arlequin (version 3.0): an integrated software package for population genetics data analysis. Evolutionary Bioinformatic. Vol.1, pp: 47-50.
14
Frankham, R., 2005. Genetics and extinction. Biological journal of Conservation. Vol. 126, pp: 131-140.
15
Fraser, D.J. and Bernatchez, L., 2001. Adaptive evolutionary conservation: towards a unified concept for defining conservation units. Molecular Ecology. Vol. 10, pp: 274-2752.
16
Fu, Y.X., 1997. Statistical tests of neutrality of mutations against population growth, hitchhiking and background selection. Genetics. Vol. 147, pp: 915-925.
17
Gold, B.S.; Dart, R.C. and Barish, R.A., 2002. Bites of venomous snakes. The New England Journal of Medicine. Vol. 347, pp: 347-335.
18
Hall, T.A., 1999. BioEdit: A user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/NT. Nucleic Acids Symposium Series. Vol. 41, pp: 95-98.
19
Hung, C.; Drovetski, S.V. and Zink, R.M., 2012. Multilocus coalescence analyses support a mtDNA-based phylogeographic history for a widespread palearctic passerine bird, Sitta europaea. Evolution. Vol. 66, pp: 2850 -2864.
20
IUCN. 2019. The IUCN Red List of Threatened Species. Version 2019-2 (Accessed 08 August 2019) http://www. iucnredlist.org.
21
Kapli, P.; Botoni, D.; Ilgaz, Ç.; Kumlutaş, Y.; Avcı, A.; Rastegar-Pouyani, N.; Fathinia, B.; Lymberakis, P.; Ahmadzadeh, F. and Poulakakis, N., 2013. Molecular phylogeny and historical biogeography of the Anatolian lizard Apathya (Squamata, Lacertidae). Molecular Phylogenetics and Evolution. Vol. 66, pp: 992-1001.
22
Klemmer, K., 1968. Classification and distribution of European, North African, and north and west Asiatic venomous snakes. Venom. Anim. Their Venoms. Vol. 1, pp: 309-325.
23
Latifi, M., 1991. The Snakes of Iran., English edition. Society for the study of Amphibians and Reptiles, Oxford, Ohio. viii 159 pp., 24 text-figs; 25 col. pls; 3 tables. (Translated from the Iranian edition by Sajadian, S., volume editors, Leviton, A. and Zug, G.,).
24
Leigh, J.W. and Bryant, D., 2015. POPART: full-feature software for haplotype network Construction. Methods in Ecology and Evolution. Vol. 6, pp: 1110-1116.
25
Li, H.L.; Fong, E.S. and Lin, S., 2008. Ventral coloration differentiation and mitochondrial sequences of the Chinese Cobra (Naja atra) in Taiwan. Conservation Genetic. Vol. 9, pp: 1089-1097.
26
Librado, P. and Rozas, J., 2009. DnaSP v5: a software for comprehensive analysis of DNA polymorphism data. Bioinformatics. Vol. 25, pp: 1451-1452.
27
Lin, A.L.; Zhao, Q.; Ji, X.; Lin, L.; Zhao, Q. and Ji, X., 2008. Conservation Genetics of the Chinese Cobra (Naja atra) Investigated with Mitochondrial DNA Sequences Conservation Genetics of the Chinese Cobra (Naja atra). Investigated with Mitochondrial DNA Sequences. Zoological Science. Vol. 25, pp: 888-893.
28
Lin, L.; Qu, Y.; Li, H.; Zhou, K. and Ji, X., 2012. Genetic Structure and Demographic History Should Inform Conservation: Chinese Cobras Currently Treated as homogenous show population divergence. Vol 7, pp: e36334.
29
Lin, L.; Hua, L.; Qu, Y.; Gao, J. and Ji, X., 2014. The Phylogeographical Pattern and Conservation of the Chinese Cobra (Naja atra) across Its Range Based on Mitochondrial Control Region Sequences. PLoS One. Vol. 9, pp: e106944.
30
Meister, B.; Hofer, U.; Ursenbacher, S. and Baur, B., 2010. Spatial genetic analysis of the grass snake, Natrix natrix(Squamata: Colubridae), in an intensively used agricultural landscape. Biological journal of linnean society. Vol. 101, pp: 51-58.
31
Mohammadabadi, M.R., 2017. Role of clostridium perfringens in pathogenicity of some domestic animals. Journal of Advances in Agriculture. Vol. 7, pp: 1117-1121.
32
Moritz, C., 1994. Defining ‘evolutionarily significant units’ for conservation. Trends ecology evolution. Vol. 9, pp: 373-375.
33
Nazarizadeh, M.; Kaboli, M., Rezaie, H.R.; Harisini, J.I. and Pasquet, E., 2016. Phylogenetic relationships of Eurasian Nuthatches (Sitta europaea Linnaeus, 1758) from the Alborz and Zagros Mountains, Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 62, pp: 217-226.
34
O’Shea, M., 2008. Venomous snakes of the world. New Holland Publishers.
35
Pook, C.E.; Joger, U.; Stümpel, N. and Wüster, W., 2009. When continents collide: phylogeny, historical biogeography and systematics of the medically important viper genus Echis (Squamata: Serpentes: Viperidae). Molecular Phylogenetics and Evolution. Vol. 53, pp: 792-807.
36
Queiroz, A.; Lawson, R., and Lemos-Espinal, J., 2002. Phylogenetic relationships of North American garter snakes (Thamnophis) based on four mitochondrial genes: how much DNA sequence is enough? MolecularPhylogenetics and Evolution. Vol. 22, No. 2, pp: 315-329.
37
Rambaut, A.; Drummond, A.J.; Xie, D.; Baele, G. and Suchard, M.A., 2018. Posterior summarisation in Bayesian phylogenetics using Tracer 1.7. Systematic Biology. Vol. 67, pp: 901-904.
38
Ronquist, F. and Huelsenbeck, J.P., 2003. MrBayes 3: Bayesian phylogenetic inference under mixed models. Bioinformatics. Vol. 19, pp: 1572-1574.
39
Rogers, A.R. and Harpending, H., 1992. Population growth makes waves in the distribution of pairwise genetic differences. Molecular biology and evolution. Vol 9, No. 3, pp: 552-569.
40
Ryder, O.A., 1986. Species conservation and systematics: the dilemma of subspecies. Trends Ecology Evolution. Vol. 1, pp: 9-10.
41
Sambrook, J.; Fritsch, E.F. and Maniatis, T., 1989. Molecular cloning: a laboratory manual. Cold Spring Harbour: ColdSpring Harbour Press.
42
Slatkin, M. and Hudson, R.R., 1991. Pairwise comparisons of mitochondrial DNA sequences in stable and exponentially growing populations. Genetics. Vol. 129, pp: 555-562.
43
Slowinski, J.B. and Wüster, W., 2000. A new cobra (Elapidae: Naja) from Myanmar (Burma). Herpetologica. pp: 257-270.
44
Smith, J.M. and Haigh, J., 1974. The hitch-hiking effect of a favourable gene. Genetics Research. Vol. 23, No. 1, pp: 23-35.
45
Stamatakis, A.; Ludwig, T. and Meier, H., 2005. RAxML III: a fast program for maximum likelihood-based inference of large phylogenetic trees. Bioinformatics. Vol. 21, pp:456- 463.
46
Tajima, F., 1989. Statistical method for testing the neutral mutation hypothesis by DNA polymorphism. Genetics. Vol.123, pp: 585-595.
47
Tamura, K.; Peterson, D.; Peterson, N.; Stecher, G.; Nei, M., and Kumar, S., 2011. MEGA5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Molecular biology and evolution. Vol. 28, pp: 2731-2739.
48
Thompson, J.D.; Higgins, D.G. and Gibson, T.J., 1994. CLUSTAL W: improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position-specific gap penalties and weight matrix choice. Nucleic acids research. Vol. 22, No. 22, pp: 4673-4680.
49
Valenta, J., 2009. Venomous Snakes: Envenoming, Therapy. Nova Science Publishers.
50
Wallach, V.; Wuester, W. and Broadley, D.G., 2009. In praise of subgenera: taxonomic status of cobras of the genus Naja Laurenti (Serpentes: Elapidae). Zoo taxa. Vol. 2236, pp: 26-36.
51
Wüster, W., 1990. Population evolution of the Asiatic cobra (Naja naja) species complex. Univ. Aberdeen 500.
52
Wüster, W. and Broadley, D.G., 2003. A new species of spitting cobra from north-eastern Africa (Serpentes: Elapidae: Naja). Journal of Zoology, London. Vol. 259, pp: 345-359.
53
Wüster, W.; Crookes, S.; Ineich, I.; Mané, Y.; Pook, C.E.; Trape, J.F. and Broadley, D.G., 2007. The phylogeny of cobras inferred from mitochondrial DNA sequences: Evolution of venom spitting and the phylogeography of the African spitting cobras (Serpentes: Elapidae: Naja nigricollis complex). MolecularPhylogenetics and Evolution. Vol. 45, pp: 437- 453.
54
Wüster, W. and Thorpe, R.S., 1988. Population affinities of the asiatic cobra (Naja naja) species complex in south-east Asia: reliability and random resampling. Biological Journal of Linnean Society. Vol. 36, pp: 391-409.
55
Xia, X. and Lemey, P., 2009. The phylogenetic handbook: a practical approach to DNA and protein phylogeny.
56
Young, A.G., 2000. Genetics, demography and viability of fragmented populations. Cambridge University Press.
57
Zhao, E.; Wang, S. and Commission, E.S.S., 1998. China red data book of endangered animals: Amphibia and reptilia. Amphibia & reptilia/chief compiler Zhao Ermi. Science Press.
58
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی فونستیک ماهیان غیربومی در رودخانه های استان تهران
ایران از لحاظ اقلیم حیاتی در منطقه تبادلات جغرافیای جانوری مهمی قرار گرفته و از این رو دارای فون ماهیان متنوع و جالبی است. این پژوهش به بررسی فونستیک گونه های غیربومی ماهیان در رودخانه های استان تهران (جاجرود، حبله رود، نمرود و لار) پرداخته است. در طی این تحقیق که در پاییز و زمستان 1395 و بهار و تابستان 1396 صورت گرفت، نمونه برداری از ماهیان به صورت فصلی با استفاده از دستگاه الکتروشوکر و تورهای دستی و انتظاری در دوازده ایستگاه در رودخانه های استان تهران صورت گرفت. نمونهها پس از صید با فرمالین تثبیت شده و جهت بررسیهای زیست سنجی به آزمایشگاه منتقل گردیدند و توسط کلیدهای شناسایی معتبر مورد شناسایی قرار گرفتند. این بررسی نشان داد به طورکلی 7 گونه متعلق به 6 جنس و 3 خانواده از 3 راسته مربوط به رده ماهیان استخوانی شناسایی شدند. از نظر تعداد گونه، ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) دارای رتبه اول و ماهی کاراس یا کپور برکه ای (Carassius carassius) در مرتبه بعدی قرار داشت. هم چنین گونه های ماهی آزاد چشمه ای (Salvelinus fontinalis)، ماهی خیاطه (Alburnoides eichwaldii)، سیاه ماهی (Capoeta aculeate)، ماهی قرمز یا کپور طلایی (Carassius auratus)، ماهی لوچ سبیلک دار (Oxynemacheilus angorae) نیز در رودخانه های مورد مطالعه صید شدند. بیش ترین تعداد گونه های غیربومی در رودخانه ها عبارت بود از: رودخانه لار> رودخانه جاجرود > رودخانه حبله رود = نمرود. در ایستگاه های فشم، خمده و پلور هیچ گونه غیربومی یافت نشد. نتایج حاکی از گسترش گونه های ماهیان غیربومی در رودخانه های استان تهران از طریق عمدی و غیرعمد است. این ماهیان، ممکن است برای غذا و مکان های تخم ریزی با ماهیان بومی رقابت کنند. حتی برخی از آن ها قادرند با ماهیان بومی تولید هیبرید نمایند، ممکن است ماهیان بومی را شکار نموده و یا به عنوان منبع بیماری بر جمعیت ماهیان بومی تاثیر بگذارند و از این حیث شناسایی آن ها و بررسی تاثیراتشان بر منابع آبی بسیار حائز اهمیت می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_133291_ec4c3c688c95c85d68a4554c749eba4c.pdf
2021-04-21
207
214
10.22034/aej.2021.133291
فونستیک
ماهی
گونه غیربومی
رودخانه
تهران
راضیه
برزگر
biogenhuman@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین-پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، پیشوا، ایران
AUTHOR
سیامک
یوسفی سیاه کلرودی
siamakyousefi@iauvaramin.ac.ir
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین-پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، پیشوا، ایران
LEAD_AUTHOR
اصغر
عبدلی
a_abdoli@sbu.ac.ir
3
گروه تنوع زیستی و مدیریت اکوسیستمها، پژوهشکده علوم محیطی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
AUTHOR
افشین، ی.، 1373. رودخانه های ایران. وزارت نیرو. 345 صفحه.
1
باقری، س.؛ عباسی، ک.؛ مرادی، م.؛ میرزاجانی، ع.ر. و رامین، م.، 1395. مطالعه تنوع گونه ای و فراوانی ماهیان دریاچه شهدای خلیج فارس، چیتگر- تهران. مجله علمی شیلات ایران. دوره 25، شماره 3، صفحات 15 تا 24.
2
بناگر، غ.؛ کرمی، م.؛ حسن زاده، ب. و قاسمپور، م.، 1387. بررسی فراوانی و تنوع زیستی گونه های ماهیان رودخانه هراز در استان مازندران. مجله علوم محیطی. سال 6، شماره 2، صفحات 22 تا 31.
3
ستاروند، س. و یوسفی سیاه کلرودی، س.، 1398. شناسایی ماهی های منابع آبی جنوب شرق استان تهران (منطقه ورامین). فصلنامه دانش زیستی ایران. دوره 14، شماره 4، صفحات 23 تا 30.
4
عباسی، ک.؛ نیک سرشت، ک. و نوروزی، ه.ا.، 1388. شناسایی و بررسی جمعیت ماهیان تالاب های آق گل، پیرسلمان و مناطق تالابی رودخانه های گاماسیاب و حرم آباد استان همدان. اکوبیولوژی تالاب (تالاب) .دوره 1، شماره 1، صفحات 71 تا 90.
5
عبدلی، ا.، 1395. راهنمای میدانی ماهیان آب های داخلی ایران. انتشارات ایران شناسی. چاپ اول. 272 صفحه.
6
عبدلی، ا. و نادری، م.، 1387. تنوع زیستی ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر. انتشارات علمی آبزیان. تهران. 244 صفحه.
7
علمی، ا.م.؛ عبدلی، ا.؛ خراسانی، ن.ا. و یوسفی سیاه کلرودی، س.، 1390. شناسایی و فراوانی ماهیان رودخانه سرباز (استان سیستان و بلوچستان). فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 3، شماره 3، صقحات 11 تا 18.
8
علیزاده مرزناکی، ع.؛ شجاعی کاوان، ل.؛ تقیان، ح. و شهریاری، ر.، 1395. بررسی تنوع زیستی و فراوانی و پراکنش ماهیان رودخانه گاوه رود استان کرمانشاه. مجله علوم تکثیر و آبزی پروری. دوره 4، شماره 8، صفحات 69 تا 84.
9
قاسمی، ح. و رامین ، م.، 1391. مطالعه تنوع وغنای گونهای ماهیان رودخانه های حوضه شرق دریاچه ارومیه. مجله علمی شیلات ایران. جلد ۲۱ ، شماره ۴ ، صفحات ۶۷ تا ۷۴.
10
قلی زاده، م.؛ خسروزاده، ف. و پیوندی، ن.، 1393. مطالعه فونستیک ماهیان رودخانه کلارود بابل (استان مازندران). پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. دوره 2، شماره 1، صفحات 1 تا 10.
11
کیوانی، ی.؛ نصری، م.؛ عباسی، ک. و عبدلی، ا.، 1395. اطلس ماهیان آب های داخلی ایران. انتشارات جهاد دانشگاهی واحد خوارزمی. چاپ اول. 234 صفحه.
12
گلچین منشادی، ع.؛ نغمه سنج، ح. و صادقی لیمنجوب، ر.، 1393. شناسایی فون ماهیان بومی و غیربومی دریاچه پریشان در استان فارس. مجله زیست شناسی جانوری. دوره 7، شماره 1، صفحات 83 تا 92.
13
نصیرآبادی، ن.، 1391. اطلس ماهیان دریایی خلیج فارس و دریای عمان. 90 صفحه. قابل دسترس در: سایت پارس بوک.
14
یوسفی سیاه کلرودی، س. و ایزدیان، م.، 1388. شناسایی و تعیین فراوانی ماهیان آب های داخلی استان مرکزی. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 1، شماره 1، صفحات 1 تا 8.
15
یوسفی سیاه کلرودی، س.؛ ذکریاپور، ف.؛ ناصحی، م. و علمی، ا.م.، 1397. بررسی فونستیک گونه های ماهیان سدسیمره استان ایلام. مجله محیط زیست و توسعه فرابخشی. دوره 3، شماره 59، صفحات 19 تا 28.
16
Coad, B.W., 2013. The freshwater fishes of Iran. Updated 18 December 2010. Available from: www.briancoad.com
17
Coad, B.W. and Abdoli, A., 2000. Systematics of an isolated population of tooth carp-from northern Iran (Cyprinodontidae). Zoology in the Middle East. Vol. 21, pp: 87-102.
18
Fishbase. 2012. http://www fishbase. Org.
19
Miller, S. and Harley, J., 2016. Zoology. McGraw-Hill Companies, 10 th edition. 273 p.
20
Pazooki, J.; Tajbakhsh, F. and Masoumian, M., 2011. Parasitic infection of an endemic fish (Blicca bjoerkna) and an exotic fish (Hemiculter beucisculus) in Anzali Lagoon, Caspian Sea, Iran. Iran J Parasitol. Vol. 6, No. 3, pp: 66-73.
21
Pourkazemi, M., 2006. Caspian Sea sturgeon conservation and fisheries: past present and future. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, No. 1, pp: 12-16.
22
Taylor, C.M.; Holder, T.L.; Fiorillo, R.A.; Williams, L.R.; Thomas, R.B. and Warren, J.R., 2006. Distribution, abundance and diversity of stream fishes under variable environmental conditions. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 63, No. 1, pp: 43-54.
23
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین شاخص های غذایی ماهی گیش خال سفید Carangoides malabaricus در آب های استان هرمزگان (دریای عمان و خلیج فارس)
این مطالعه به منظورتعیین رژیم غذایی ماهی گیش خال سفید (Carangoides malabaricus) در آب های خلیج فارس و دریای عمان (استان هرمزگان) به مدت 12 ماه از آذر ماه 1395 تا آبان ماه 1396 انجام شده است. نمونه برداری با تورهای ترال و تور انتظاری انجام شد. جهت بررسی رژیم غذایی، 438 نمونه از گونه گیش خال سفید (C. malabaricus) انتخاب شد. نتایج داده های توصیفی زیست سنجی ماهی مذکور نشان داد که حداکثر طول کل 365 میلی متر(در اردیبهشت ماه) و حداقل طول کل 140 میلی متر(در شهریور ماه) و هم چنین حداکثر میزان وزن 534/5 گرم و حداقل آن 57/8 گرم بود. در طول دوره مورد بررسی میانگین طول کل ماهیان 18/41 ± 261 میلی متر و میانگین وزن ماهیان 25/35 ± 191/78 گرم بود. شاخص GASI نشان داد اوج تغذیه این گونه در خرداد ماه است. میزان شاخص تهی بودن معده (CV)، برای این گونه در طول تحقیق %62/33 به دست آمد که می توان گفت این ماهی یک ماهی نسبتا کم خور است. از نظر نوع غذای خورده شده ، با توجه به حجم ماهیان هضم شده، ماهی کالروموتو به عنوان غذای اصلی برای گیش خال سفید محسوب می شود. میگو را می توان به عنوان غذای فرعی و بقیه گونه های خورده شده که عبارت بودند از اسکویید و خرچنگ را می توان به عنوان غذای تصادفی مطرح کرد.
http://www.aejournal.ir/article_133342_acf9ed6b26bfc52d5f6487779aa697e8.pdf
2021-04-21
215
220
10.22034/aej.2021.133342
رژیم غذایی
خلیج فارس و دریای عمان
ماهی گیش خال سفید
Carangoides malabaricus
غلامرضا
بام
bam13481006@gmail.com
1
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
احسان
کامرانی
ezas47@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
فرهاد
کی مرام
farhadkaymaram@gmail.com
3
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
شهلا
جمیلی
shahlajamilli45@yahoo.com
4
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
سید محمدرضا
فاطمی
reza_fatemi@hotmail.com
5
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
دهقانی، ر.، 1382. پایش ذخایر کفزیان آب های استان هرمزگان به روش مساحت جاروب شده. سازمان تحقیقات و آموزش کشاورزی، موسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان. 77 صفحه
1
دوستدار، م.؛ دریانبرد، غ.؛ وثوقی، غ.؛ کاظمیان، م. و رحمتی، ر.، 1388. بررسی رژیم غذایی طبیعی ماهی گیش کاذب در آب های ساحلی دریای عمان (Lactarius lactarius). مجله دامپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی. شماره 12، صفحات 32 تا 37.
2
صادقی، م.س.؛ ابدالی، س. و معنوی، ا.، 1393. بررسی رژیم غذایی ماهی گیش خال سفید Carangoides malabaricus در آب های استان هرمزگان (محدوده خلیج فارس). مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. سال 9، شماره 1، صفحات 69 تا 78.
3
کمالی، ع.؛ رضا، د.؛ درویشی، م. و حسینی، س.ع. ، ۱۳۹۵. بررسی تغذیه طبیعی ماهی گیش پوزه دراز C. chrysophorys در آب های استان هرمزگان. چهارمین همایش ملی شیلات و آبزیان ایران. بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس.
4
Bartulovic, V.; Lucic, D.; Conides, A.; Glamuzina, B.; Dulcic, J.; Hafner, D. and Batistic, M., 2004. Food of sand smelt, Atherina boyeri Risso, 1810 (Pisces: Atherinidae) in the estuary of the Mala Neretva River (middle-eastern Adriatic, Croatia). Journal of Marine Sciences. Vol. 68, pp: 597-603.
5
Benjamin, J. and Cayetano, C., 2000. A review of the biology of the family Carangidae, with emphasis on species found in Hawaiin waters. Journal of Fish Biology. Vol. 12, pp: 1-33.
6
Dadzie, F.; Abou- Seedo, F. and Al-Qatton, E., 2002. The food and feeding habits of the silver pomfert, Pampus argentus, (Eupharsen) in Kuwait waters. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 16, pp: 61-67.
7
Euzen, E., 1987. Food habits and diet composition of some fish of Kuwait. Blletin Science. Vol. 9, pp: 65-86.
8
Fisher, W. and Bianchi, G., 1984. FAO species identification sheets for fisheries purposes, western Indian Ocean. FAO Publication, Rome, Italy. Vol. 1-5, pp: 325-335.
9
Al-rasady, I.; Covender, A. and Al-jufaili, S.M., 2012. Reproductive biology of longnose trevally (Carangoides chrysophrys) in the Arabian Sea, Oman, Environmental Biology of Fishes. Vol. 93, No. 2, pp: 177-184.
10
James, P.S.B.R., 1986. The precent status of ribbon fish in India, CMFRI Special Publication. Vol. 24, 49 p.
11
Kingston, S.D.; Venkataramani, V.K. and Venkataramanujam, K., 1999. Food habits and feeding intensity of finlet scad Atule mate (Teleostei) off Gulf of mannar, Southest Coast of India.indian journal of marine sciences. Vol. 28. pp: 307-311.
12
Lin, P.L. and Shao, K.T., 1999. A review of the carangid fishes (family carangidae) from Taiwan with descriptions of four new Records. Zoological Studies. Vol. 38, No. 1, pp: 33-68.
13
Palmeira, C. and Monteiro, N., 2010. Ecomorphology and food habits of Teleost fishes Trachinotus carolinus (Teleostei: Carangidae) and Menticirrhu slittoralis (Teleostei: Sciaenidae) in habiting the surfzone off Nitero. Brazilian Journal of Oceanography. Vol. 58, pp: 1-9.
14
Prejs, A. and Colomine, G., 1981. Métodos para el estudio de los alimentos y las relaciones tróficas de los eces. Caracas: U. Central de Venezuela/U. de Varsovia.
15
Randall, J.; Roger, C. and Steene, G.R., 1997. Fishes of the Great Barrier Reef and Coral Sea. University of Hawaii Press. USA.
16
Sakri, I.; Muhammad, M. and MohdAzmi, A., 2003. Stomach contents of six Commercially important emersal fishes in the South China Sea. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 3, pp: 11-16.
17
Tripp, V.A.; Arreguon, S.; Lnchez, F. and Zetina, R.M.J., 2012. The food of Selene peruviana (Actinopterygii: Perciformes: Carangidae) in the southern Gulf of California. Acta Ichthyologica Et Piscatoria. Vol. 42, No. 1, pp: 1-7.
18
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی ساختار سنی و پویایی جمعیت ماهی کریشو (Saurida tumbil) در حوضه آب های کلاهی تا درگهان استان هرمزگان
در این مطالعه به ارزیابی ساختار سنی، پویایی جمعیت ماهی و برخی ویژگی های زیستی ماهی کریشو (Saurida tumbil) در حوضه آب های کلاهی تا درگهان استان هرمزگان پرداخته شد. داده ها بر اساس نمونه های حاصل از صید تجاری و به وسیله لنج های صیادی ترال در طول فصول آزاد صید میگو در سال 1398 به دست آمد. بیش ترین میزان همبستگی طولی در این گونه مربوط به رابطه طول کل و طول چنگالی (r2= 0.9988) می باشد. هم چنین نتایج نشان دهنده رابطه معنی دارطولی-وزنی در این گونه میباشد (r2= 0.9373). میزان ضریب b محاسبه شده در این مطالعه (2/81) به طور معنی داری با عدد 3 تفاوت داشت که این امر نشانگر الگوی رشد آلومتریک منفی در این گونه می باشد. هم چنین نتایج تعیین سن بر اساس ستون مهره نشان داد نمونه های مورد مطالعه در گروه های سنی 1 تا 7 قرار داشته و بیش ترین فراوانی مربوط به ماهیان 2 ساله بود. هم چنین معادله رشد برتالانفی برای این گونه در منطقه کلاهی به صورت Lt=50.02 (l-exp(-0.28 (t+0.27)) تعیین گردید. میزان مرگ و میر طبیعی، صیادی و کل برای این گونه به ترتیب 0/67، 1/99 و 2/66 محاسبه شد. بر این اساس میزان ضریب بهره برداری محاسبه شده 0/75 می باشد که نشان دهنده فشار صیادی بر ذخایر این گونه می باشد. از این رو به منظور بهبود وضعیت ذخایر موجود در این آب ها توصیه می شود که میزان تلاش صیادی را کاهش داده و اقدامات لازم در جهت کاهش صید ضمنی در تور های ترال کف روب در منطقه صورت پذیرد.
http://www.aejournal.ir/article_133452_b1088e9935483c80268bd6a13c676080.pdf
2021-04-21
221
230
10.22034/aej.2021.133452
تعیین سن
ماهی کریشو
پویایی جمعیت
روابط طولی-وزنی
رشدآلومتریک
حسن
غبیشی
hassan97gh10@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
AUTHOR
محمد
خسروی زاده
mohamad.27kh@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
مهسا
حقی
haghi.mahsa@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
AUTHOR
امید
بیرقدار کشکولی
omid.beyraghdar@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
حسین زاده صحافی، ه.؛ دقوقی، ب. و رامشی، ح.، 1379. اطلس نرم تنان خلیج فارس. انتشارات موسسه تحقیقات شیلات ایران. 208 صفحه.
1
رهنما، ب.؛ کامرانی، ا.؛ عبدولی، ا.؛ ناجی، ر. و رییسی، ه.، 1398. بررسی شاخص های رشد و مرگ و میر ماهی کلمه Rutilus rutilus caspicus (Yakovlev, 1870 ) در آب های جنوب دریای خزر استان گلستان . فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 11، شماره 3، صفحات 181 تا 190.
2
شکرابی، پ.، 1389. بررسی موفورولوژیک. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم تحقیقات تهران.
3
صادقی، ن.،1380. ماهیان جنوب ایران، انتشارات نقش مهر. تهران. 44 صفحه.
4
عزیزپورعربی، پ.؛ ولی نسب،ت. و حسینی، س.غ.، 1395. بررسی رژیم غذایی ماهی کریشو (Surida tumbill) در شرق آب های منطقه دریای عمان. فصلنامه علوم و تکثیرآبزی پروری. سال 4، شماره 11، صفحات 29 تا 42.
5
کیمرام، ف.، 1379. پویایی شناسی و مدیریت جمعیت تون زرد باله دریای عمان. رساله دکتری، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران. 125 صفحه.
6
محسنی، ف.؛ ولی نسب، ت.؛ رمضانی فرد، ا.؛ فاطمی، س.م. و مرتضوی، م.ص.، 1398. بررسی رابطه طول- وزن و رشد در گربه ماهیان غالب خلیج فارس، محدوده استان هرمزگان. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 11، شماره 2، صفحات 295 تا 304.
7
نوروزی، ح.،1389. تعیین خصوصیات زیستی و برآورد پارامترهای پویایی جمعیت ماهی حسون معمولی. رساله دکتری شیلات. دانشگاه آزاد. واحد علوم و تحقیقات تهران. 90 صفحه.
8
Abdurahimian, K.P.; Harishayak, T.; Zacharia, P.U and Mohamad, K.S.,2004. Length-Weight relationships of commercially important marine fishes, and shellfishes of the southern coast of Karnataka, India journal of world fish. Vol. 27, pp: 9-14.
9
Bagenal, T.B. and Tesch, F.W., 1978. Age and growth. Methods for assessment of fish production in fresh waters. IBP Hand book No. 3. Bagenal, T., (Ed.). Blackwell Scientific Publications, Oxford. pp: 101-136.
10
Beyraghdar Kashkooli, O.; Asadollah, S. and Ahmadi, Y., 2018. Age and growth assessment of Chondrostoma regium (Heckel, 1843) (Teleostei: Cyprinidae) inhabiting the Zayandeh River (Iran) using different structures. Iranian journal of ichthyology. Vol. 5, No. 2, pp: 118-125.
11
Bianchi, G., 1985. Fieldguide to the commercial Marine and brackish-water Species of Pakistan. FAO species identification sheets for fishery purposes. FAO, Rome. Italy. 200 p.
12
Biswas, S.P.,1993. Manual of methods in fish biology. Asian Publishers. Pvt. Ltd. 157 p.
13
Carbonara, P. and Follesa, M.C., 2019. Handbook on fish age determination: A Mediterranean experience. Studies and Reviews. No. 98. Rome, FAO. 192 p.
14
Chakraborty, S.K.; Biradar, R.S.; Jaiswar A.K. and Palaniswamy, R., 2005. Population parameters of some commercially important fishery resources of Mumbai coast. Central Institute of Fisheries Education, Deemed University, Versova, Mumbai. 63 p.
15
Chhandaprajnadarsin,E.M.; Roul,S.K.; Swain, S.; Dash,S.S.; Jaiswar, A.K.; Shenoy,L. and Chakraborty, S.K.,2019. Growth, mortality, and stock assessment of brushtooth lizard fish Saurida undosquamis (Richardson, 1848) from Mumbai waters, northwest coast of India.Indian Journal of Geo-Marine Sciences (IJMS). Vol. 48, No. 10, pp: 1540-1547.
16
Cooper, A.B., 2004. A Guide to Fisheries Stock Assessment. Department of Natural Resources University of New Hampshire. 44 p.
17
Corpuz, A.; Saeger, J. and Sambilay, V., 1985. Population parameters of commercially important fishes in Philippine waters. Tech. Rep. Dep. Mar. Fish. Univ. Philipp. Visayas. Vol. 6, 99 p.
18
El-Halfawy, M.M.; Ramadan, A.M. and Mahmoud, W.F., 2007. Growth and Reproduction of Female Brushtooth Lizardfish Saurida undosquamis (Richardson) from the Gulf of Suez, Egypt. J. Fish. Aquat. Sci. Vol. 24, No. 1-2, pp: 143-148.
19
FAO. 2006. Trilateral workshop on lantenfish in the Gulf of Oman. FAO Fisheries Repo. No. 665. 22 p. ISBN: 925104726x.
20
FAO. 2019. FAO yearbook. Fishery and Aquaculture Statistics 2017/FAO annuaire. Statistiques des pêches et de l’aquaculture 2017/FAO anuario. Estadísticas de pesca y acuicultura 2017. Rome/Roma.
21
Gabr, M.H. and Mal, A.O., 2017. Stock assessment of the lizardfish Saurida tumbil (Bloch, 1795) in Jizan fisheries, Saudi Arabia. The Egyptian Journal of Aquatic Research. Vol. 43, No. 2, pp: 147-153.
22
Gulland, J.A., 1971. The fish resources of the Ocean. Fishing News (Books), (Farnham). 255 p.
23
Jaiswar, A.K.; Chakraborty, S.K.; Raja, R.; Palaniswamy R. and Bommireddy, S., 2002. Population dynamics of lizardfish Saurida tumbil (Teleostomi/Synodontidae) from Mumbai, west caust of India. Indian journal of marine sciences. Vol. 32, No. 2, pp: 147-150.
24
Kalhoro, M.A.; Liu, Q.; Valinassab, T.; Waryani, B.; Abbasi, A.R. and Memon, K.H., 2015. Population dynamics of greater lizardfish, Saurida tumbil from Pakistani waters. Pakistan Journal of Zoology. Vol. 47, No. 4, pp: 921-931.
25
King, M., 1995. Fisheries biology: assessment and management. Blackwell Pub. 341 p.
26
Najmudeen, T.M.; Sivakami, S.; Seetha, P.K.; Kishore, T.G.; Divya, N.D. and Zacharia, P.U., 2015. Lizardfish fishery of Kerala with some aspects of the stock characteristics of the greater lizardfish Saurida tumbil (Bloch, 1795). Indian Journal of Fish. Vol. 62, No. 4, pp: 31-36.
27
Pauly, D., 1983. Some Simple Methods for the Assessment of Tropical Fish Stocks. FAO Fisheries Technical paper. No. 234, Rome. 52 p.
28
Pauly, D., 1984. Fish population dynamics in tropical water: a manual for use with programmable calculators. ICLARM Studies and Reviews. 8 p.
29
Pauly, D. and Munro, J.L., 1984. Once more on the comparison of growth in fish and invertebrates. ICLARM Fishbyte. Vol. 1, pp: 21-22.
30
Rahimibashar, M.R.; Alipour, V.; Hamidi, P. and Hakimi, B., 2012. Biometric characteristics, diet and gonad index of lizardfish (Saurida tumbil, Bloch 1795) in North of the Persian Gulf. World J. Fish. Mar. Sci. Vol. 4, pp: 1-6.
31
Sakai, T.; Yoneda, M.; Shiraishi, T.; Tokimura, M.; Horikawa, H. and Matsuyama, M., 2009. Age and growth of the lizardfish Saurida elongata from the Tsushima/Korea Strait. Fish.Sci. Vol. 75, pp: 895-902.
32
Silvestre, G.T. and Garces, L.R., 2004. Population parameters and exploitation rate of demersal fishes in Brunei Darussalam (1989-1990). Fish. Res. Vol. 69, pp: 73-90.
33
Sparre,P. and Venema,S.C., 1998. Introduction to tropical fish stock assessment. part 1. Manual FAO Fish, Tech. Pap. 306. FAO, Rome, Italy. 407 p.
34
Valinassab, T.; Daryanabard, R.; Dehghani, R. and Pierce, J.G., 2006. Abundance of demersal fish resources in the Persian Gulf and Oman Sea. J.Mar. Biol. Ass. Vol.86, pp: 1455-1462.
35
Welcomme, R., 2001. Inland fisheries ecology and management. Food and Agriculture Organization. 384 p.
36
ORIGINAL_ARTICLE
پویایی شناسی جمعیت ماهی کلمه خزری Rutilus caspicus (Yakovlev, 1870) در جنوب شرق دریای خزر
این مطالعه با هدف بررسی پارامترهای پویایی شناسی جمعیت ماهی کلمه خزری (R. caspicus) در آب های جنوب شرق دریای خزر در سال 1397 (در 6 ماهه فصل صید) انجام شد. تعداد 215 نمونه با تور پره صید و طول کل با دقت 0/01 و وزن کل 0/001 مورد زیست سنجی واقع شدند. نمونه ها در دامنه طولی 16/74 تا 30/03 سانتی متر و دامنه وزنی 36 تا 342 گرم قرار داشتند. سن ماهیان کلمه صید شده در دامنه سنی +3 تا +7 برآورد گردید. دامنه تغییرات b بین 3/49-3/05 به دست آمد. رابطه نمایی طول کل و وزن کل W=0.009L3/09 به دست آمد که نشان دهنده رشد آلومتریک مثبت است. بعد از برازش به روش حداقل مربعات رابطه طول- وزن W=0.009L3/42 محاسبه شد. معادله رشد فونبرتالانفی برای این گونهLt=37/1033(1-EXP (-0/19(t+0/40)) محاسبه، و ضریب مرگ و میر طبیعی با استفاده از فرمول تجربی پائولی برای ماهی کلمه خزری 0/445 به دست آمد. بالاترین مقدار فاکتور وضعیت و ضریب رشد لحظه ای برای این گونه به ترتیب 0/42 و 0/44 به دست آمد. در مجموع، به نظر می رسد ذخایر ماهی کلمه در بخش جنوب شرقی دریای خزر به شدت در معرض خطر بوده و نیازمند ارائه راهکارهای مدیریتی کارا جهت حفظ ذخایر آن می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_133509_1876d8ad41ac990d5c5359f892db9f7f.pdf
2021-04-21
231
238
10.22034/aej.2021.133509
R. caspicus
رشد
مرگ و میر
دریای خزر
حمید
پوررشید
pourrashidhamid@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
رحمان
پاتیمار
rpatimar@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
LEAD_AUTHOR
هادی
رییسی
raeisi_hadi@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
عیسی
حاجی رادکوچک
eisahajirad@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران
AUTHOR
غلامعلی
بندانی
banda_gh@yahoo.com
5
مرکز تحقیقات ذخایر آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، گرگان، ایران
AUTHOR
بندانی، غ.، 1395. بررسی بیولوژی (تغذیه، تخم ریزی و رشد ماهی کلمه R. caspius) در آب های ایرانی جنوب خزر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. مرکز تحقیقات ذخایر آبزیان آبهای داخلی. گرگان، ایران. 48 صفحه.
1
تاتار، ر.د.؛ قربانی، ر.؛ گرگین، س.؛ بندانی، غ. و یحیایی، م.، 1397. تعیین الگوی بهره برداری ماهی کلمه خزری (R. caspicus Yakovlev, 1870) در بخش جنوب شرقی دریای خزر (محدوده سواحل استان گلستان). مجله بهره برداری و پرورش آبزیان. جلد 7، شماره 2، صفحات 9 تا 19.
2
تقوی جلودار، ح. و امری صاحبی، ا.، 1395. بررسی برخی خصوصیات زیستی، سن، جنسیت و پارامترهای رشد ماهی کلمه (Rutilus rutilus caspicus) در سواحل جنوب شرقی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. دوره 25، شماره 1، صفحات 183 تا 193.
3
غنی نژاد، د.؛ عبدالملکی، ش.؛ صیادبورانی، م.؛ پورغلام، ا.؛ فضلی، ح.؛ بندانی، غ. و عباسی، ک.، 1391. ارزیابی ذخایر ماهیان استخوانی دریای خزر. گزارش نهایی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی ایران. تهران، ایران. 165 صفحه.
4
قلی اف، د.ب.ا.، 1997. کپورماهیان و سوف ماهیان حوضه جنوبی و میانی دریای خزر (ساختار جمعیت ها، اکولوژی، پراکنش و تدابیری جهت بازسازی ذخایر). ترجمه عادلی، ی.، 1377. مرکز تحقیقات شیلاتی استان گیلان. 44 صفحه.
5
Bagenal, T. and Tesch, F., 1978. Age and growth. In: Methods for assessment of fish production in fresh waters. Bagenal, T.B., (Ed.). IBP Handbook No 3. Blackwell Scientific Publications, Oxford, UK. pp: 101-136.
6
Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology. South Asian publishers Pvt. Ltd, New Delhi, International Book Co. Abseccon high Lands, N.J., USA. 147 p.
7
Burrough, R.J. and Kannedy, C.R., 1979. The occurrence and natural alleviation of stunting in a population of roach, Rutilus rutilus (L.). Journal of Fish Biology. Vol. 15, pp: 93-109.
8
Froese, R., 2006. Cube law, condition factor and Length Weight relationships: history, meta-analysis and recommendations. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, pp: 241-253.
9
Haddon, M., 2011. Modelling and Quantitative Methods in Fisheries. Second Edition, Taylor and Francis press. 449 p.
10
Halimi, M.; Golpour, A.; Dadras, H.; Mohamadi, M. and Chamanara, V., 2014. Quantitive characteristics and chemical composition in Caspian Roach (Rutilus rutilus caspicus) sperm. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 13, No. 1, pp: 81-90.
11
Hedayati, S.A.A.; Ghafari Farsani, H.; Shahbazi Naserabad, S. and Gerami, M.H., 2015. Acute Toxicity and Behavioral Changes Associated with Diazinon in Rutilus rutilus caspicus and Hypophthalmicthys molitrix. Iranian Journal of Toxicology, Arak University of Medical Sciences. Vol. 9, No. 30, pp: 1354-1359.
12
Hong-Jing, L. and Cong-Xin, X., 2008. Age and growth of the Tibetan Cat fish, Giyptosternum maculatum in the Brahmaputra River, China. Zoological Studies. Vol. 47, pp: 555-563.
13
Kas’yanov, A.N. and Izyumov, Y.U., 1995. Growth of roach, Rutilus rutilus caspicus, in Russia and adjacent countries. Journal of Ichthyology. Vol. 35, pp: 256-272.
14
Kazancheev, E.N., 1981. Ryby Kaspiiskogo Morya [Fishes of the Caspian Sea]. Leg kayai Pischch evaya Promysh lennost, Moskva. 167 p.
15
Kazanchev, A.N., 1981. Caspian fish and its catchment area. Translated by Shariati A. 1992. Fisheries Company of Iran. Tehran, Iran. 171 p.
16
Kiabi, B.H.; Abdoli, A. and Naderi, M., 1999. Status of the fish fauna in the south Caspian Basin of Iran. Journal of Zoology in the Middle East. Vol. 18, pp: 57-65.
17
Larmuseau, M.H.D.; Freyhof, J.; Volckaert, F.A.M. and Van Houdt, J.K.J., 2009. Matrilinear phylogeography and demographical patterns of Rutilusrutilus: implications for taxonomy and conservation. Journal of Fish Biology. Vol. 75, pp: 332-353.
18
Mann, R.H.K., 1973. Observation on the age, growth, reproduction and food of the roach Rutilus rutilus (L.) in two rivers in southern England. Journal of Fish Biology. Vol. 5, pp: 707-736.
19
Mehdipoor, N.; Saeedpour, B. and Bandani, G.H.A., 2016. Determine of age structure, genus ratio, and growth model of Caspian roach brood stocks in south east of Caspian Sea (Golestan Province). Applied Ichthyology Research. Vol. 4, No. 1, pp: 17-27.
20
Naddafi, R.; Abdoli, A.; Hassanzadeh Kiabi, B.; Mojazi Amiri, B. and Karami, M., 2005. Age, growth and reproduction of the Caspian roach (Rutilus rutilus caspicus) in the Anzali and Gomishan wetlands, North Iran. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 21, pp: 492-497.
21
Papageorgiou, N.K., 1979. The length-weight relationship, age, growth and reproduction of the roach, Rutilus rutilus (L.) in Lake Volvi. Journal of Fisheries and Biology. Vol. 62, pp: 529-538.
22
Paull, G.C.; Filby, A.L. and Tyler, C.R., 2009. Environment Biological Fisheries. Vol. 85, pp: 277. https:// doi.org/ 10.1007 / s10641- 009-9492-5.
23
Pauly, D., 1980. On the interrelationship between natural mortality, growth parameters, and mean environmental temperature in 175 fish stocks. Journal du Conceal International pour exploration de la Mer. Vol. 39, No. 3, pp: 175-192.
24
Pauly, D., 1983. Some Simple Methods for the Assessment of Tropical Fish Stocks. FAO Fisheries Technical Publications, Rome, Italy. 52 p.
25
Przybylski, M., 1996.Variation in fish growth characteristics along a river course. Hydrobiologia. Vol. 325, pp: 39-46.
26
Savenkova, T.P., 1994: Distribution and characteristics of the biology of young-of-the-year vobla, Rutilus rutilus caspicus, in the southeastern Caspian Sea. Journal of Ichthyology. Vol. 34, pp: 28-38.
27
Sedaghat, S. and Hoseini, S.A., 2012.Age and Growth of Caspian Roach, Rutilus rutilus caspicus Jakowlew, 1870 in Southern Caspian Sea, Iran. World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 45, pp: 533-535.
28
Sturges, H.A., 1926. The Choice of a Class Interval. Journal of the American Statistical Association. Vol. 21, pp: 65-66.
29
Turkmen, M.; Erdogan, O.; Yeldirim, A. and Akyurt, I., 2001. Reproduction tactics, age and growth of Capoeta capoeta umbla Heckle 1843, from the Akkale region of the Karasu River, Turkey. Fisheries Research. Vol. 1220, pp: 1-12.
30
ORIGINAL_ARTICLE
کارایی پودر گل میخک Eugenia caryophyllata جهت بی هوشی مولدین ماهی سفیدک سیستان Schizothorax zarudnyi و سنجش پارامترهای بیوشیمیایی و ایمنی خون
گل میخک (Eugenia caryophyllata) به دلیل این که محصولی طبیعی و ارزان قیمت می باشد و خطرات سمیت کمی دارد به عنوان ماده بی هوشی در ماهی مورد استفاده قرار می گیرد. مطالعه حاضر به منظور تعیین غلظت مناسب بی هوشی مولدین ماهی سفیدک سیستان Schizothorax zarudnyi توسط پودر گل میخک جهت استفاده در تکثیر مصنوعی این ماهی انجام شد. مولدین نر (55/8 ± 407/14 گرم) و ماده (291/3 ± 1240/1 گرم) با غلظت های 200، 250 و 300 میلی گرم در لیتر پودر گل میخک و هفت تکرار برای هر غلظت بی هوش شدند. علاوه بر مدت زمان لازم برای طی مراحل بی هوشی و احیا، پارامترهای بیوشیمایی سرم خون شامل گلوکز و پروتئین کل و پارامترهای ایمنی سرم خون شامل C3 ،C4 و IgM قبل و بعد از بی هوشی مورد ارزیابی قرار گرفتند. نتایج نشان داد مدت زمان صرف شده برای طی مراحل بی هوشی و احیا مولدین ماده در غلظت 250 میلی گرم در لیتر به ترتیب 9/78 ± 160/14 و 12/1 ± 145 ثانیه بود که مجموعا کم تر از غلظت های 200 (20/2 ± 319 ثانیه بی هوشی و 12/15 ± 108/63 ثانیه احیا) و 300 (7/86 ± 117 ثانیه بی هوشی و 22/24 ± 271 ثانیه احیا) میلی گرم در لیتر بود؛ هم چنین، برای مولدین نر این زمان در غلظت 300 میلی گرم در لیتر (3/73 ± 86 ثانیه بی هوشی و 11/25 ± 64/71 ثانیه احیا) کم تر از غلظت های 200 (7/81 ± 155/71 ثانیه بی هوشی و 7/73 ± 56/43 ثانیه احیا) و 250 (12/57 ± 116/86 ثانیه بی هوشی و 14/44 ± 70/71 ثانیه احیا) میلی گرم در لیتر بود. مقادیر گلوکز، پروتئین کل و C4 تحت تاثیر بی هوشی تغییر نکردند، ولی مقدار IgM در غلظت 300 میلی گرم در لیتر مولدین نر و ماده کاهش معنی دار و مقدار C3 در غلظت 300 میلی گرم در لیتر مولدین نر افزایش معنی دار داشت (0/05>p ). نتایج نشان داد که غلظت 250 میلی گرم در لیتر برای بی هوشی مولدین ماهی سفیدک سیستان مناسب می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_133528_3d0fe091697471f125244c00393d3ba8.pdf
2021-04-21
239
246
10.22034/aej.2021.133528
بی هوشی
مولد
سفیدک سیستان
ایمنی
گل میخک
عبدالعلی
راهداری
rahdari57@uoz.ac.ir
1
گروه شیلات، پژوهشکده تالاب بین المللی هامون، دانشگاه زابل، زابل، ایران
LEAD_AUTHOR
علی
خسروانی زاده
akhosravanizadeh@gmail.com
2
گروه شیلات، پژوهشکده تالاب بین المللی هامون، دانشگاه زابل، زابل، ایران
AUTHOR
احمد
قرایی
agharaei551@gmail.com
3
گروه شیلات، پژوهشکده تالاب بین المللی هامون، دانشگاه زابل، زابل، ایران
AUTHOR
علیرضا
افشاری
alirezaafshari1357@gmail.com
4
معاونت آبزی پروری، اداره کل شیلات آب های داخلی سیستان و بلوچستان، سازمان شیلات ایران، زابل، ایران
AUTHOR
سمیرا
سارانی
sarani.samira@yahoo.com
5
مرکز تکثیر و بازسازی ذخایر ماهیان بومی و گرمابی، اداره کل شیلات آب های داخلی سیستان و بلوچستان، سازمان شیلات ایران، زهک، ایران
AUTHOR
اخلاقی، م. و میراب بروجردی، م.، 1378. بررسی اثر بی هوش کنندگی گل میخک در ماهی و تعیین LC50 آن. مجله دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران. دوره 54، شماره 2، صفحات 49 تا 52.
1
خسروانی زاده، ع.، 1397. مقایسه اثرات بی هوش کننده اسانس گل میخک در ماهیان آنجل (Pterophyllum scalare)، گوپی (Poecilia reticulate) و طلایی (Carassius auratus). فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 10، شماره 3، صفحات 315 تا 322.
2
سلطانی، م.؛ امیدبیگی، ر.؛ رضوانی، س.؛ مهرابی، م. و چیت ساز، ح.، 1380. مطالعه اثرات هوشبری اسانس و عصاره گل میخک در ماهی قزل آلای رنگین کمان تحت برخی شرایط کیفی آب. مجله دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران. دوره 56، شماره 4، صفحات 85 تا 89.
3
صدیق بازکیاگوراب، م.؛ ایمانپورنمین، ج. و موسی پورشاجانی، م.، 1391. اثرات بی حسی و بی هوشی عصاره روغنی میخک (Clove oil) و عصاره سنبل الططیب (Valeriana officinalis L.) بر قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 4، شماره 4، صفحات 163 تا 168.
4
علیشاهی، م.؛ چشمه، ب.؛ پیغان، ر.؛ قربانپور، م. و محمدیان، ت.، 1392. بررسی تاثیر بی هوشی با MS222، اسانس گل میخک و فنوکسی اتانول بر برخی شاخص های ایمنی ماهی کپورمعمولی. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. دوره 5، شماره 18، صفحات 23 تا 32.
5
Barata, M.; Soares, F.; Aragao, C.; Almeida, A.C.; Pousao-Ferreira, P. and Ribeiro, L., 2016. Efficiency of 2-phenoxyethanol and clove oil for reducing handling stress in reared meagre, Argyrosomus regius. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 47, pp: 82-92.
6
Becker, A.G.; Cunha, M.A.; Garcia, L.O.; Zeppenfeld, C.C.; Parodi, T.V.; Maldaner, G.; Morel, A.F. and Baldisserotto, B., 2013. Efficacy of eugenol and the methanolic extract of Condalia buxifolia during the transport of the silver catfish Rhamdia quelen. Neotropical Ichthyology. Vol. 11, pp: 675-681.
7
Bressler, K. and Ron, B., 2004. Effect of anesthetics on stress and the innate immune system of gilthead seabream (Sparus aurata). The Israeli Journal of Aquaculture Bamidgeh. Vol. 56, pp: 5-13.
8
Buckley, R.H., 1986. Humoral immunodeficiency. Clinical Immunology and Immunopathology. Vol. 40, pp: 13-24.
9
Burtis, C.A.; Ashwood, E.R. and Bruns, D.E., 2011. Tietz Textbook of Clinical Chemistry and Molecular Diagnostics. Saunders, 5th edition. 2256 p.
10
Cagiltay, F.; Atanasoff, A.; Saglam, M.; Cagatay, S.; Nikolov, G.; Ekim, O. and Secer, F.S., 2017. Comparison of different anesthetic protocols for morphometric measurements of carp (Cyprinus carpio). Advanced Research in Life Sciences. Vol. 1, pp: 81-84.
11
Coyle, S.D.; Durborow, R.M. and Tidwell, J.H., 2004. Anesthetics in Aquaculture. Southern Regional Aquaculture Center Publication no. 3900, pp: 6.
12
Fernandes, I.M.; Bastos, Y.F.; Barreto, D.S.; Lourenço, L.S. and Penha, J.M., 2017. The efficacy of clove oil as an anaesthetic and in euthanasia procedure for small-sized tropical fishes. Brazilian J of Biology. Vol. 77, pp: 444-450.
13
Gilderhus, P.A. and Marking, L.L., 1987. Comparative efficacy of 16 anesthetic chemicals on rainbow trout. North American J of Fisheries Management. Vol. 7, pp: 288-292.
14
Harikrishnan, R.; Kim, J.S.; Balasundaram, C. and Heo, M.S., 2012. Immunomodulatory effects of chitin and chitosan enriched diets in Epinephelus bruneus against Vibrio alginolyticus infection. Aquaculture. Vol. 326, pp: 46-52.
15
Husen, M.A.; Sharma. S., 2014. Efficacy of anesthetics for reducing stress in fish during aquaculture practices a review. Journal of Sciences, Engineering and Technology. Vol. 10, pp: 104-123.
16
Iwama, G.K.; McGeer, J.C. and Pawluk, M.P., 1989. The effects of five fish anaesthetics on acid-base balance, hematocrit, cortisol and adrenaline in rainbow trout. Canadian Journal of Zoology. Vol. 67, pp: 2065-2073.
17
Keene, J.L.; Noakes, D.L.; Moccia, R.D. and Soto, C.G., 1998. The efficacy of clove oil as an anaesthetic for rainbow trout. Aquaculture Research. Vol. 9, pp: 89-101.
18
Mylonas, C.C.; Cardinaletti, G.; Sigelaki, I. and Polzonetti-Magni, A., 2005. Comparative efficacy of clove oil and 2-phenoxyethanol as anesthetics in the aquaculture of European sea bass and gilthead sea bream (Sparus aurata) at different temperatures. Aquaculture. Vol. 246, pp: 467- 481.
19
Nelson, J.S.; Grande, T.C. and Wilson, M.V.H., 2016. Fishes of the World. John Wiley & Sons, Fifth edition. 752 p.
20
Ortuno, J.; Esteban, M.A. and Messeguer, J., 2002. Effects of four anesthetics on the innate immune response of gilthead seabream. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 12, pp:49-59.
21
Ringø, E.; Olsen, R.E.; Vecino, J.L.G.; Wadsworth, S. and Song, S.K., 2012. Use of immunostimulants and nucleotides in aquaculture: a review. Journal of Marine Science: Research & Development. Vol. 2, pp: 1-22.
22
Ross, G.L. and Ross, B., 2008. Anaesthetic and Sedative Techniques for Aquatic Animals. Blackwell Scientific, Oxford, UK, 3rd edition. 240 p.
23
Schreck, C.B., 1981. Stress and compensation in teleostean fishes: responses to social and physical factors. pp: 295-321. In: Pickering, A.D., Stress in Fish. Academic Press, London.
24
Schreck, C.B. and Moyle, P.B., 1990. Methods for fish biology. Maryland: American Fisheries Society.
25
Shaluei, F.; Hedayati, A.; Jahanbakhshi, A. and Baghfalaki, M., 2012. Physiological responses of great sturgeon to different concentrations of 2-phenoxyethanol as an anesthetic. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 38, pp: 1627-1634.
26
Silva, E.M.P.; Oliveira, R.H.F.; Ribeiro, M.A.R. and Coppola, M.P., 2009. Anesthetic effect of clove oil on lambari (Astyanax altiparanae). Revista de Ciência Rural. Vol. 39, pp: 1851-1856.
27
Suljević, D.; Alijagić, A. and Islamagić, E., 2017. Temporal influence of spawning on serum biochemical parameters in brown trout Salmo trutta (teleostei: salmonidae). Bulgarian Journal of Agricultural Science. Vol. 23, pp: 485-490.
28
Thomas, P. and Robertson, L., 1991. Plasma cortisol and glucose stress responses of red drum (Sciaenops ocellatus) to handling and shallow water stressors and anesthesia with MS 222, quinaldine sulphate and metomidate. Aquaculture. Vol. 96, pp: 69-86.
29
Uribe, C.; Folch, H.; Enriquez, R. and Moran, G., 2011. Innate and adaptive immunity in teleost fish: A review. Veterinarni Medicina. Vol. 56, pp: 486-503.
30
Velišek, J. and Svobodova, Z., 2004. Anaesthesia of common carp with 2-phenoxyethanol: Acute toxicity and effects on biochemical blood profile. Acta Vetrinaria Brno. Vol. 73, pp: 247-252.
31
Velisek, J.; Svobodova, Z. and Piackova, V., 2007. Effects of 2-phenoxyethanol anesthesia on haaematological profile on common carp (Cyprinus carpio) and rainbow trout. Acta Vetrinaria Brno. Vol. 76, pp: 487-492.
32
Wedemeyer, G.A., 1997. Effects of rearing conditions on the health and physiological quality of fish in intensive culture. pp. 35-72. In: Iwama G.K., Pickering A.D., Sumpter J.P., Schreck C.B. (eds.). Fish Stress and Health in Aquaculture. Cambridge University Press, Cambridge.
33
Woolsey, J.; Holcomb, M.; and Ingermann, R.L., 2004. Effect of temperature on clove oil anesthesia in steelhead fry. North American Journal of Aquaculture. Vol. 66, pp: 35-41.
34
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی مقایسه ای سطوح متفاوت اسیدی فایرهای سدیم دی فرمات (NDF) و فورمی(Formic) بر کارایی رشد، تغذیه و فعالیت آنزیم های گوارشی در فیل ماهی (Huso huso)
اخیرا استفاده از محرک های رشد مثل اسیدی فایرها (گروهی از اسیدهای آلی) در آبزی پروری افزایش یافته است. این مطالعه با هدف بررسی اثر سطوح مختلف اسیدی فایر سدیم دی فرمات (NDF) و اسید فرمی (فورمیک) بر پارامتر های رشد، تغذیه و آنزیم های گوارشی در بچه فیل ماهیان (Huso huso) انجام شد. تعداد 420 قطعه بچه ماهی فیل ماهی با میانگین وزن 1/72± 30/55 گرم تهیه و به طور تصادفی در قالب هفت گروه با سه تکرار (هر تکرار 20 عدد ماهی) تقسیم به مدت 60 روز با جیره های آزمایشی تغذیه شدند. گروه های 1، 2 و 3 به ترتیب حاوی 0/05، 0/1 و 0/15 درصد سدیم دی فرمات (NDF) و گروه های 4، 5 و 6 حاوی مقادیر 0/05، 0/1 و 0/15 درصد اسید فرمی (فرمیک) در جیره غذایی بودند. جیره گروه شاهد بدون اسیدی فایر بود. نتایج نشان داد اکثریت پارامترهای رشد (% BWI، CF، SGR، FCR، FER، PER) و آنزیم گوارشی در گروه ها تغذیه شده با اسیدی فایر نسبت به گروه شاهد اختلاف معنی داری داشتند (0/05>p ). به طوری که کم ترین ضریب تبدیل غذایی (FCR) (0/5 ± 0/0) و بیش ترین ضریب رشد ویژه (0/005 ± 5/3) در گروه 0/1 درصد سدیم دی فرمات در روز 30 اما کم ترین ضریب تبدیل غذایی (FCR) (0/81 ± 0/001) و بیش ترین ضریب رشد ویژه (0/001 ± 2/77) در گروه 0/1 درصد اسید فرمیک در روز 60 مشاهده شد (0/05>p ). هر دو آنزیم مورد بررسی (تریپسین، کیمو تریپسین) تحت تاثیر اسیدی فایر قرار گرفتند به طوری که بیش ترین فعالیت آنزیم تریپسین و کیمو تریپسین در گروه 0/1 درصد سدیم دی فرمات در 30 روز اول بود (0/05>p ). فعالیت آنزیم آلکالین فسفاتاز در تیمارهای اسیدی فایر افزایش نسبی داشت ولی این افزایش در تیمارهای سدیم دی فرمات نسبت به گروه شاهد معنی دار نبود (0/05<p ) اما در روز 30 میزان این آنزیم در گروه های اسید فرمیک بیش تر بود. به طور کلی می توان بیان کرد افزودن ترکیبی اسیدی فایر سدیم دی فرمات (NDF) به میزان 0/1 درصد به جیره غذایی فیل ماهی ترجیحا در به مدت 30 روز باعث بهبود پارامترهای رشد و کاهش ضریب تبدیل غذایی (FCR)، افزایش سطح آنزیم گوارشی می شود که نهایتا شاخص سلامت این ماهی را بهبود می بخشد.
http://www.aejournal.ir/article_133636_949f12dd860af54cf1cfa0d7bc658170.pdf
2021-04-21
247
258
10.22034/aej.2021.133636
اسیدی فایرها
رشد
تغذیه
آنزیم های گوارشی
فیل ماهی
آرش
جدی مصطفی لو
arash.jedi@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد قائم شهر، دانشگاه آزاد اسلامی، قائم شهر، ایران
AUTHOR
مسعود
هدایتی فرد
persiafish@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد قائم شهر، دانشگاه آزاد اسلامی، قائم شهر، ایران
LEAD_AUTHOR
مجتبی
کشاورز دیوکلایی
pkeshavarz61@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد قائم شهر، دانشگاه آزاد اسلامی، قائم شهر، ایران
AUTHOR
تکاور
محمدیان
takavar_m2002@yahoo.com
4
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
ایمانی، ا.؛ یزدان پرست، ر.؛ فرهنگی، م.؛ بختیاری، م.؛ مجازی امیری، ب. و سلجوقی، ظ،ش.، 1388. بررسی فعالیت آنزیم های گوارشی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) در طی دوره محرومیت غذایی و غذادهی مجدد. مجله علوم دریایی ایران. دوره 8، شمارههای 3 و 4، صفحات 24 تا 33.
1
خواجه پور، ف.، 1389. تاثیر جایگزینی بخشی از پودر ماهی با آرد سویا و اسیداستیک بر عملکرد رشد، بقا و ترکیب لاشه فیل ماهی جوان (Huso huso). پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 71 صفحه.
2
زمانی، ع.؛ حاجی مرادلو، ع.؛ مدنی، ر.؛ فرهنگی، م. ویلکی، ا.، 1386. اندازه گیری و مقایسه سطح فعالیت برخی آنزیم های گوارشی در لارو ماهی آزاد دریای خزر و ماهی قزل آلای رنگین کمان در مرحله شروع تغذیه خارجی. مجله علمی شیلات ایران. دوره 16، شماره 3، صفحات 73 تا 80.
3
محمدیان، ت.، 1392. ارزیابی توان پروبیوتیکی و تحریک کنندگی ایمنی برخی لاکتوباسیلوسهای جدا شده از روده ماهی شیربت (Barbus grypus). پایان نامه دکتری. دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز. 80 صفحه.
4
Ahmadnia, H.R.; Motlag, H.R.; Farhangi, M.; Rafiee, Gh. and Noori, F., 2012. Modulating gut microbiota and digestive enzyme activities of Artemia urmiana by administration of different levels of (Bacillus subtilisand) and (Bacillus licheniformis). Aquaculture International. Vol. 20, No. 4, pp: 693-705.
5
Castillo, A.; Sanchez, C.; Dominguez, J.; Kaattari, S.L. and Villena, A.J., 1993. Ontogeny of IgM and IgM-bearing cells in (rainbow trout). Developmental and Comparative Immunology. Vol. 17, No. 5, pp: 419-424.
6
Castillo, S.; Rosales, M.; Pohlenz, M. and Gatlin, D.M., 2014. Effects of organic acids on growth performance and digestive enzyme activities of juvenile red drum (Sciaenops ocellatus). Aquaculture. Vol. 433, pp: 6-12.
7
Ebrahimi, M.; Daeman, N.H.; Chong, C.M.; Karami, A.; Kumar, V.; Hoseinifar, S.H. and Romano, N., 2017. Comparing the effects of different dietary organic acids on the growth, intestinal short-chain fatty acids, and liver histopathology of red hybrid tilapia (Oreochromis sp.) and potential use of these as preservatives. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 43, No. 4, pp:1195-1207.
8
Erlanger, B.F.; Kokowsky, N. and Cohen, W., 1961. The preparation and properties of two new chromogenic substrates of trypsin. Archives of Biochemistry and Biophysics. Vol. 95, No. 2, pp: 271-278.
9
Hardy, R.W., 2000. New developments in aquatic feed ingredient, and potential of enzyme supplements. A vances en Nutricion Aquicola V. memorias, V. Simposium Internacional de nutricion Acuicola. 19-22 Noviembre Merdia, Yucatan, Mexico. pp: 216-227.
10
Hassaan,M.S.; Wafa, M.A.; Soltan, M.A.; Goda, A.S. and Mogheth, N.M.A., 2014. Effect of Dietary Organic Salts on Growth, Nutrient Digestibility, Mineral Absorption and Some Biochemical Indices of Nile Tilapia; Oreochromis niloticus L. Fingerlings. World Applied Sciences Journal Vol. 29, No. 1, pp: 47-55.
11
Hoseinifar, S.H.; Sun, Y.Z. and Caipang, C.M., 2017. Short chain fatty acids as feed supplements for sustainable aquaculture: an updated view. Aquaculture Research. Vol. 48, No. 2, pp:1380-1391.
12
Hoseinifar, S.H.; Esteban, M.Á.; Cuesta, A. and Sun, Z., 2015. Prebiotics and fish immune response: a review of current knowledge and future perspectives. Reviews in Fisheries Science & Aquaculture. Vol. 23, pp: 315-328.
13
Kuzmina, V.V.; Shekovtsova, N. and Bolobonina, V., 2010. Activity dynamics of proteinases and glycosidases of fish chyme with exposure in fresh and brackish water. Biology Bulletin. Vol. 37, No. 6, pp: 605-611.
14
Li, W.F.; Feng, J.; Xu, Z.R. and Yang, C.M., 2004. Effects of non-starch polysacarides enzymes on pancreatic and small intestinal digestive enzyme activities in piglet fed diets containing high amounts of barley. World Journal of Gastroenterology. Vol. 10, No. 6, pp: 856-890.
15
Liebert, F.; Mohamed, K. and Lückstädt, C., 2010. Effects of diformates on growth and feed utilization of all male Nile Tilapia fingerlings (Oreochromis niloticus) reared in tank culture. XIV International Symposium on Fish Nutrition and Feeding, Qingdao, China, Book of Abstracts. 190 p.
16
Lim, C.; Lückstädt, C.; Webster, C.D. and Kesius, P., 2015. Organic acids and their salts (chapter 15) In: Lee, C.S.; Lim, C.; Gatlin, D.M. and Webster, C.D., (Eds.), Dietary Nutrients, Additives and Fish Health. Wiley-Blackwell. pp: 305-315.
17
Luckstadt, C., 2008. The use of acidifiers in fish nutrition. CAB Reviews: Perspectives in Agriculture, Veterinary Science, Nutrition and Natural Resources. Vol. 3, pp: 1-8.
18
Mohammadian, T.; Alishahi, M.; Tabandeh, M.; Ghorbanpoor, M. and Gharibi, D., 2017. Effect of Lactobacillus plantarum and Lactobacillus delbrueckii subsp. bulgaricus on growth performance, gut microbial flora and digestive enzymes activities in Tor grypus (Karaman, 1971). Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 16, No. 1, pp: 296-317.
19
Morken, T.; Kraugerud, O.F.; Barrows, F.T.; Sorensen, M.; Storebakken, T. and Overland, M., 2011. Sodium diformate and extrusion temperature affect nutrient digestibility and physical quality of diets with fish meal and barley protein concentrate for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 317, pp :138-145.
20
Ng, W.K.; Koh, C.H.; Teoh, C.Y. and Romano, N., 2015. Farm-raised tiger shrimp (Penaeus monodon) fed commercial feeds with added organic acids showed enhanced nutrient utilization. Aquaculture Resources. Vol. 449, pp: 69-77.
21
Romano, N.; Koh, C.B. and Ng, W.K., 2015. Dietary microencapsulated organic acids blend enhances growth, phosphorus utilization, immune response, hepatopancreatic integrity and resistance against Vibrio harveyi in white shrimp, Litopenaeus vannamei. Aquaculture. Vol. 435, pp: 228-236.
22
Rungruangsak, T.K.; Rustad, A.; Sunde, J.; Eiane, S.A.; Jensen, H.B.; Opstvedt, J.; Nygård, E.; Samuelsen, T.A.; Mundheim, H. and Luzzana, U., 2002. In vitro digestibility based on fish crude enzyme extract for prediction of feed quality in growth trials. Journal of the Science of Food and Agriculture. Vol. 82, No. 6, pp: 644-654.
23
Silva, B.C.; Nolasco, S.H.; Magallón Barajas, F.; Civera Cerecedo, R.; Casillas Hernández, R. and Seiffert, W., 2015. Improved digestion and initial performance of white leg shrimp using organic salt supplements. Aquac.Nutr. Vol. 22, No. 5, pp: 997-1005.
24
Zhu, Y.; Qiu, X.; Ding, Q.; Duan, M. and Wang, C., 2014. Combined effects of dietary phytase and organic acid on growth and phosphorus utilization of juvenile yellow catfish (Pelteobagrus fulvidraco). Aquaculture. Vol. 430, pp: 1-8.
25
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تاثیر اسیدآمینه هیستیدین بر رشد، بقا، برخی شاخص های خونی و پروفیل اسیدآمینه لاشه بچه فیل ماهی (Huso huso)
اسیدهای آمینه آزاد به عنوان موادی که می توانند رفتار جستجوی غذا را به خصوص در گونه هایی که برای یافتن طعمه متکی به حس بویایی و چشایی هستند، تحریک کرده و نقش جاذب را ایفا کند، شناخته شدند. این طرح آزمایشی به مدت 9 هفته به منظور تعیین اثر اسید آمینه هیستیدین به عنوان جاذب در جیره غذایی فیل ماهی جوان (Huso Huso) بر عملکرد رشد، پارامترهای خونی و پروفیل اسیدهای آمینه انجام شد. برای انجام این آزمایش، تعداد 180 قطعه فیل ماهی جوان با میانگین وزنی 0/99± 26/3 گرم در 18 تانک پلی اتیلنی در قالب یک طرح کاملا تصادفی قرار داده شد (تعداد 10 قطعه ماهی در هر تانک). ماهیان روزانه در سه وعده غذایی در حد سیری در ساعت های 7، 14 و 17 با جیره غذایی آزمایشی شامل: 0/5، 1 و 1/5 درصد اسیدآمینه هیستیدین تغذیه شدند. نتایج این آزمایش نشان داد که بالاترین میزان افزایش وزن (WG)، درصد افزایش وزن (WG%)، ضریب تبدیل غذایی (FCR)، نرخ رشد ویژه (SGR)، نرخ رشد روزانه (DGR) و فاکتور وضعیت (CF) مربوط به تیمار تغذیه شده با جیره آزمایشی حاوی 1/5 درصد اسیدآمینه هیستیدین به عنوان جاذب غذایی بود (0/05>p )؛ در پایان آزمایش شاخص های خون شناسی مانند: تعداد سلول های گلبول قرمز (RBC)، گلبول سفید (WBC)، هماتوکریت (Htc)، هموگلوبین (Hb) و فعالیت های کمپلمان مورد سنجش قرار گرفت. نتایج نشان داد میانگین فعالیت های کمپلمان، حجم متوسط گلبول های قرمز (MCV)، میزان متوسط هموگلوبین (MCH) و غلظت متوسط هموگلوبین در گلبول قرمز (MCHC) تفاوت معنی داری بین تیمارها نداشت (0/05<p ). هم چنین نتایج نشان داد که در نرخ رشد تمامی گروه های ماهیان تغذیه شده با جیره های غذایی حاوی درصدهای متفاوت هیستیدین تفاوت معنی داری وجود داشت (0/05>p )؛ هم چنین، پروفیل اسیدهای آمینه ترکیبات بدن در تیمارهای مختلف اختلاف معنی دار نداشت (0/05<p ). با توجه به نتایج به دست آمده، افزودن این اسید آمینه به عنوان جاذب غذایی در جیره غذایی فیل ماهی جوان جهت ارتقای سلامتی و بهبود عملکرد رشد این گونه اقتصادی توصیه می گردد.
http://www.aejournal.ir/article_133644_5a0ae9572c5bc642db30c5b4a358a59f.pdf
2021-04-21
259
268
10.22034/aej.2021.133644
فیل ماهی
هیستیدین
جاذب غذایی
پارامترهای خونی
اسیدآمینه
محمد
سوداگر
sudagar_m@gau.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
حمیده
ذکریائی
hzakariaee87@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
علی
حاجی بگلو
alihajibeglou@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
پورعلی فشتمی، ح.ر.؛ غقله مرمضی، ج.؛ یزدانی، م.؛ شکوریان، م.؛ نظامی، ا.؛ یگانه، ه.؛ سیدحسنی، م.؛ پژند، ذ.؛ پیکران، ن.؛ صادقی راد، م.؛ دهقانی، م.؛ یارمحمدی، م. و حافظیه، م.، 1395. تاثیر جاذب های غذایی (متیونین، لیزین و آلانین) در رشد و نرخ بازماندگی لارو و بچه ماهی انگشت قد تاس ماهی ایرانی. طرح تحقیقاتی وزارت جهاد کشاورزی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، موسسه تحقیقاتی علوم شیلاتی کشور، انیستتوی تحقیقات بین المللی تاس ماهیان دریای خزر. 62 صفحه.
1
جعفری شموشکی، و.؛ کاسومیان، ا.؛ ابطحی، ب. و عابدیان کناری، ع.، 1385. مطالعه رفتار ترجیح بویایی در بچه تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus) با استفاده از اسیدهای آمینه آزاد. مجله علوم و فنون دریایی ایران. دوره 5، شمارههای 3 و 4، صفحات 13 تا 21.
2
درویش بسطامی، ک.؛ سوداگر، م.؛ ایمانپور، م.ر. و طاهری، ع.، 1387. تأثیر سطوح مختلف عصاره دافنی و آرتمیا به عنوان مواد جاذب غذایی بر روی غذاگیری و شاخص های رشد در بچه فیل ماهیان پرورشی Huso huso. مجله علمی شیلات. دوره 17، شماره 4، صفحات 35 تا 44.
3
دهقانی، م. و عادلی، ا.، 1395. تغذیه آبزیان پرورشی و مدیریت آن. همایش ملی آبزی پرری و اکوسیستم آبی پایدار. گروه شیلات دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، 7 مهرماه. 5 صفحه.
4
سوداگر، م.، 1384. بررسی مقایسه ای تاثیر افزایش برخی از مواد جاذب (بتائین، متیونین و مخلوط بتائین و متیونین) در جیره غذایی فیل ماهیان پرورشی به منظور افزایش تحریک غذاگیری و بالا بردن میزان رشد و بازماندگی. رساله دکترا. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 79 صفحه.
5
سوداگر، م.؛ جعفری شموشکی، و.؛ حسینی، س.؛ گرگین، س. و عقیلی، ک.، 1387. اثر اسید آمینه های آسپارتیک و آلانین به عنوان ماده جذب غذایی بر شاخص های رشد و بقاء بچه فیل ماهیان (Huso huso). مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی. دوره 15، شماره 1، صفحات 12 تا 25.
6
گلی، ش.، 1398. بررسی تاثیر سطوح مختلف نانوذرات نقره روی بیان ژن های گرلین، فاکتور رشد شبه انسولین و رفتار غذایی در تاس ماهی ایرانی. رساله دکترا، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان.
7
نوری، گ.؛ جعفری، و.؛ قربانی، ر. و گلی، ش.، 1392. بررسی ترجیح چشایی و رفتار تغذیه ای ماهی سفید (Rutilus frisii kutum) با استفاده از غلظت های متفاوت اسیدهای آمینه آزاد. مجله شیلات (منابع طبیعی ایران). دوره 67، شماره 1، صفحات 123 تا 136.
8
Adams, M.A.; Johnsen, P.B. and Zhou, H.Q., 1988. Chemical enhancement of feeding for the herbivorous fish Tilapia zillii. Aquaculture. Vol. 72, No. 1-2, pp: 95-107.
9
Anderson, J.S.; Higgs, D.A.; Beams, R.M. and Rowshandeli, M., 1997. Fish meal quality assessment for Atlantic salmon (Salmo salar L.) reared in sea water. Aquaculture Nutrition.Vol. 3, pp: 25-38.
10
Artyukhin, E.N., 1997. The current status of commercial sturgeon species in the Black Sea-Caspian Sea basin. Pp. 9-13 in Birstein, V.J.; Bauer, A. and Kaiser-Pohlmann, A., eds. IUCN Species Survival Commision. Sturgeon stocks and caviar trade workshop. Bonn, Germany: Occasional Papers of the IUCN Species Survival Commission. No. 17.
11
Baruah, K.; Pal, A.K.; Sahu, N.P.; Debnath, D. and Yengkokpam, Y., 2009. Dietary Crude Protein, Citric Acid and Microbial Phytase Interacts to Influence the Hemato Immunological Parameters of Rohu, LabeoRohita, Juveniles. Journal of the World Aquaculture Society.Vol. 40, No. 6, pp: 824-831.
12
Berg, L.S., 1948. Freshwater fishes of the U. S. S. R. and adjacent countries. Akad. Nauk SSSR 2ool. Inst., Vol. 1, 4th ed. 493 p. plus appendix (Translation by Israel Program for Scientific Translations, 1962).
13
Carr, W.E.S.; Netherton, J.C.; Gleeson, R.A. and Derby, C.D., 1996. Stimulants of feeding behavior in fish: Analyses of tissues of diverse marine organisms. Biological Bulletin. Vol. 190, pp: 149-160.
14
Cheng, Z.J.; Hardy, R.W. and Usry, J.L., 2003. Effects of lysine supplementation in plant protein-based. diets on the performance of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and apparaent digestibility coefficients of nutrients. Aquaculture. Vol. 215, pp: 225-265.
15
Dabrowski, K. and Poczyczynski, P. 1988. Comparative experiments on starter diets for grass carp and common carp. Aquaculture, 69: 317-332.
16
Dabrowski, K. and Guderley, H., 2002. Intermediary metabolism. Fish nutrition. Vol. 3, pp: 309-365.
17
De la Higuera, M., 2001. Effects of nutritional factors and feed characteristics on feed intake. In: Food Intake in Fish. (eds Houlihan, D.; Boujard, T. and Jobling, M.,).
18
Dongmeza, E.; Siddhuraju, P.; Francis, J. and Becker, K., 2006. Effects of dehydrated methanol extracts of moringa (Moringa oleifera Lam.) leaves and three of its fractions on growth performance and feed nutrient assimilation in Nile tilapia (Oreochromis niloticus (L.)). Aquaculture. Vol. 261, pp: 407-422.
19
Freedman, B., 1999. Encyclopedia of Endangered Species. Detroit: International Limited.
20
Fuller, M.F.; Reeds, P.J.; Cadenhead, A. and Seve, B., 1987. Protein synthesis and retention in some tissues of the young pig as influenced by dietary protein intake after early weaning. Possible connection to the energy metabolism. British Journal of Nutrition. Vol. 58, pp: 287-300.
21
Guo, Z.; Zhu, X.; Liu, J.; Han, D.; Yang, Y.; Lan, Z. and Xie, S., 2012. Effects of dietary protein level on growth performance, nitrogen and energy budget of juvenile hybrid sturgeon, Acipenser baerii ♀×A. gueldenstaedtii ♂. Aquaculture. Vol. 338-341, pp: 89-95.
22
Hasan, M.R., 2001. Nutrition and feeding for sustainable aquaculture development in the third millennium. In Subasingle, R.P.; Bueno, P.; Philips, M.J.; Hough, C.; McGladdery, S.E. and Arthur, J.R., (Eds). Aquaculture in the third millennium. Technical proceedings of the conference on aquaculture in the third millennium, Bangkok, Thailand, 20-25 Februry 2000. NACA, Bangkok and FAO, Rome. pp: 193-219.
23
Higurea, M., 2001. Effects of nutritional factors and feed characteristics on feed intake. In: Houlihan, D.; Boujard, T. Jobling, M., (Eds.) Food intake in fish. Blackwell Science Ltd. Oxford. pp: 250-268.
24
Jobling, M.; Gomes, E. and Dias, J., 2001. Feed types, manufacture and ingredients. In: Food Intake in Fish. (eds Houlihan, D.; Boujard, T. and Jobling, M.,). Blackwell Science, Oxford, pp: 25-48.
25
Jones, H.W.; Jones, G.S.; Andrews, M.C.; Acosta, A.; Bundren, C. and Garcia, J., 1982. The program for in vitro fertilization at Norfolk. Fertil Steril. Vol. 38, pp: 14-21.
26
Johnsen, P.B. and Adams, M.A., 1986. Chemical feeding stimulants for the herbivorous fish, Tilapia zillii. Comparative Biochemistry and Physiology Part A: Physiology. Vol. 83, No. 1, pp: 109-112.
27
Kasumyan, A.O., 2002. Taste preference in fish. Journal of Ichthyology. Vol. 41, pp: 88-128.
28
Kasumyan, A.O. and Doving, K., 2003. Taste preferences in fishes. Fish and fisheries. Vol. 4, pp: 289-347.
29
Kasumyan, A.O., 1999. Olfaction and taste in sturgeon behaviour. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 15, pp: 228-232.
30
Kerr, B.J. and Easter, R.A., 1995. Effect of feeding reduced protein, amino acid supplemented diets on nitrogen and energy balance. Journal of Animal Sciences. Vol. 73, pp: 3000-3008.
31
Khodorevskaya, R.; Dovgopol, G.; Zhuravleva, O. and Vlasenko, A., 1999. Present status of commercial stocks of sturgeon in the Caspian Sea basin. Environmental Biology of Fishes. Vol. 48, pp: 209-219.
32
Khajepour, F.; Hosseini, S.A. and Hoseini, S.M., 2011. Study on some hematological and biochemical parameters of Juvenile Beluga (Huso huso) fed citric acid supplemented diet. Global Veterinaria. Vol. 7, No. 4, pp: 361-364.
33
Li, P.; Mai, K.; Trushenski, J. and Wu, G., 2009. New developments in fish amino acid nutrition: towards functional and environmentally oriented aqua feeds. Amino acid. Vol. 37, pp: 43-53.
34
Mok, W.J.; Hatanaka, Y.; Seoka, M.; Itoh, T.; Tsukamasa, Y. and Ando, M., 2014. Effects of additional cysteine in fish diet on mercury concentration. Food chemistry. Vol. 147, pp: 340-345.
35
Okumus, I., 2000. Coastal aquaculture: sustainable development resource use and integrated enviromental management. Turkish journal of Marine Sciences. Vol. 6, pp: 151-174.
36
Pikitch,E.K.;Doukakis,Ph.;Lauck,L.;Chakrabarty,P.andErickson,D.L.,2005. Status, trends and management of sturgeon and paddlefish Fisheries. Fish and Fisheries. Vol. 6, pp: 233-265.
37
Piste, P., 2013. Cysteine–master antioxidant. International Journal of Pharmaceutical Chemical and Biological Sciences. Vol. 3, No. 1, pp: 143-149.
38
Polat, A. and Beklevik, G., 1998. The importance of betaine and some attractive substances as fish feed additives. Tubitak, Nature, Zoology.
39
Raspopov, V., 1993. Growth rate of Caspian Sea beluga. Journal of Ichthyology. Vol. 33, No. 9, pp: 72-84.
40
Rønnestad, I.; Conceição, L.E.; Aragão, C. andDinis, M.T., 2000. Free amino acids are absorbed faster and assimilated more efficiently than protein in postlarval Senegal sole (Solea senegalensis). The Journal of Nutrition.Vol. 130, pp: 2809-2812.
41
Rønnestad, I.; Conceição, L.E.; Aragão, C. andDinis, M.T., 2001. Assimilation and catabolism of dispensible and indispensible free amino acid in post-larval senegal sol (Solea senagalensis). Comparative biochemistry and Physioloy, Part C: Toxology and Pharmacology. Vol. 130, pp: 461-466.
42
Secor, D.; Arefiev, A.; Nikolaev, A. and Sharov, A., 2000. Restoration of sturgeons: lessons from the Caspian Sea sturgeon ranching programme. Fish and Fisheries. Vol. 1, No. 3, pp: 215-230.
43
Takeda, M.; Takii, K. and Matsui, K., 1984. Identification of feeding stimulants for juvenile eel. Bulletin of the Japanese Society of Scientific Fisheries. Vol. 50, pp: 645-651.
44
Takeda, M. and Takii, K., 1992. Gustation and nutrition in fishes: application to aquaculture. In Fish Chemoreception. pp: 271-287. Springer, Dordrecht.
45
Takii, K.; Takeda, M. and Nakao, Y., 1984. Effects of supplement of feeding stimulants to formulated feeds on feeding activity and growth of juvenile eel [Anguilla japonica]. Bulletin of the Japanese Society of Scientific Fisheries.
46
Tacon, A.G.J., 1997. Global trends in aquacalture and aquafeed production 1984-1995, Internatonal Aquafeed Directory 1997/8.
47
Traffic. 2000. Review of 10 species of Acipenseriformes, prepared in the Sixteenth Meeting of the CITES Animals Committee. 18 p.
48
Verina, I. and Persidi, N., 1979. On the sturgeon spawning grounds conditions in the Ural River. Sturgeon Culture of Inland Waters, Caspian fisheries Institute, Astrakhan. pp: 33-34.
49
Wu, G. and Davis, A., 2005. Interrelationship among methionine, choline, and betaine in channel catfish, Ictalurus punctatus. Journal of the World Aquaculture Socciety. Vol. 36, pp: 337-345.
50
Wilson, R.P., 2003. 3 amino acid and proteins. In, Hardy, J.E.H.W., (Ed), fish nutrition (third edition). Academic press, San diego. pp: 143-179.
51
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی فعالیت صیادان غیرقانونی در حوزه جنوب شرقی دریای خزر
دریای خزر زیستگاه گونه های با ارزش خاویاری است که دارای اهمیت تجاری و اکولوژیک هستند و ذخایر آن ها به دلایل متعدد از جمله گستردگی صید غیر قانونی هم اکنون به مرز فروپاشی رسیده است. این تحقیق به بررسی فعالیت صیادان غیر قانونی و هم چنین انگیزه آن ها در حوزه جنوبی شرقی دریای خزر می پردازد. در این مطالعه، با روش توصیفی- تحلیلی و طراحی پرسشنامه، اطلاعات مورد نیاز با حضور محقق در شهرها و روستاهای حاشیه جنوب شرقی دریای خزر از 203 نفر از صیادان جمع آوری گردید. پایایی پرسشنامه بر اساس آلفای کرونباخ معادل 0/71 به دست آمد. نتایج نشان داد که بیش تر صید غیرمجاز در بهار و پاییز صورت گرفته و اکثراً دارای سطح سواد پایین و بیکار هستند. روش صید آن ها استفاده از دام گوشگیر استخوانی منوفیلامنت بوده و حتی از شهرها و روستاهای دورتر از ساحل نیز برای انجام صید غیرمجاز به دریا می روند. انگیزه اقدام به صید در آن ها به سن ارتباطی نداشته ولی با افزایش سطح سواد به طور معنی دار کم تر شد. بین انگیزه اقدام به صید اظهاری و تحلیل های صورت گرفته از جواب آن ها به پرسش ها، ارتباط پایین، منفی و معنی دار وجود دارد (**25/0- =r). به طورکلی با جلوگیری از عرضه و فروش غیرقانونی ماهیان در تمام نقاط استان و شناسایی و برخورد با عوامل فروش و باندهای صیادان غیرقانونی و نیز افزایش سطح سواد و افزایش سطح آگاهی آن ها نسبت به حفاظت از این ماهیان با ارزش شیلاتی می توان به کاهش فعالیت های صید غیرقانونی کمک نمود.
http://www.aejournal.ir/article_133712_b391e10f366c0145fc28e759eabe7d1a.pdf
2021-04-21
269
278
10.22034/aej.2021.133712
انگیزه
صید غیرقانونی
ماهیان خاویاری
جنوب شرقی دریای خزر
سید مصطفی
عقیلی نژاد
aghilinejhad.1341@gmail.com
1
مدیریت امور ماهیان خاویاری گلستان، شرکت مادر تخصصی خدمات کشاورزی، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
عقیلی نژاد، م.؛ گرگین، س.؛ جولایی، ر.؛ قربانی، ر.؛ پیغمبری، ی. و محمدی، ج.، 1396. شناسایی عوامل موثر در وقوع صید غیرقانونی ماهیان تجاری در بخش جنوب غربی دریای خزر. نشریه علمی شیلات ایران. دوره 70، شماره 2، صفحات 161 تا 169.
1
عقیلی نژاد، م.؛ گرگین، س.؛ جولایی، ر.؛ قربانی، ر.؛ پیغمبری، ی. و محمدی، ج.، 1396. کاربرد مدل لاجیت در شناسایی عوامل موثر در بهره برداری غیرقانونی ماهیان تجاری دریای خزر، استان گلستان. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 4، صفحات 269 تا 276.
2
قربانی، ر.؛ باغفلکی، م. و شالویی، ف.، 1391. محیط زیست دریای خزر. انتشارات دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان.334 صفحه.
3
Agnew, D.J.; Pearce, J.; Pramod, G.; Peatman, T.; Watson, R.; Beddington, J.R. and Pitcher, T.J., 2009. Estimating the worldwide extent of illegal fishing. PLoS One. Vol. 4, pp: 45-70.
4
Baker, D.W.; Wood, A.M.; Litvak, M.K.; and Kieffer, J.D., 2005. Haematology of juvenile (Acipenser oxyrinchus) and (Acipenser brevirostrum) at rest and following forced activity. Journal of Fish Biology. Vol. 66, pp: 208-221.
5
Belova, G., 2015. Illegal unreported and unregulated fishing in the Black Sea. International Conference Knowledge based Organization. Vol. 2, pp: 408-412.
6
Cheung, W.L.; Lam, V.W.; Sarmiento, J.L.; Kearney, K.; Watson, R.; Zeller, D. and Pauly, D., 2010. Large scale redistribution of maximum catch potential in the global ocean under climate change. Global Change Biology. Vol. 16, pp: 24-35.
7
Christensen, J., 2016. Illegal, unreported and unregulated fishing in historical perspective. In: Máñez, K.S. and Poulsen, B., (eds). Perspectives on oceans past: a handbook of marine environmental history. Dordrecht: Springer. pp: 133-53.
8
CITES. 2000. Acipenseriformes. Document AC.16.7.2. 16th meeting of the CITES Animals Committee. 11–15 Dec. 2000. CITES، Shepard town, USA.
9
CITES (Covention on International Trade in Endangered Species of Wild Fauna and Flora). 2004. Sturgeon and paddlefish. Earth Negot. Bull. AC24, pp: 5-6.
10
Clarke, S., 2007. Illegal fishing in the exclusive economic zone of Japan. MRAG, Ltd., London, UK, http://www.mrag.co.uk/Documents/IUU_Japan.pdf.
11
Clarke, R.V. and Cornish, D.B., 2001. Rational choice. In: Paternoster, Raymond, Bachman, Ronet (Eds.), Explaining Criminals and Crime. Roxbury, Los Angele. 24 p.
12
Cochran, W.G., 1977. Sampling techniques (3rd ed.). New York: John Wiley & Sons. 448 p.
13
Cullen, F. and Agnew, R., 2006. Criminological Theory: Past to Present: Essential Readings, Oxford University Press.
14
Daliri, M.; Kamrani, E. and Paighambari, S.Y., 2015. Illegal shrimp fishing in Hormozgan inshore waters of the Persian Gulf. Egyptian Journal of Aquatic Research. Vol. 41, pp: 345-352.
15
Daliri, M.; Kamrani, E.; Jentoft, S. and Paighambari, S.Y., 2016. Why is illegal fishing occurring in the Persian Gulf? A case study from the Hormozgan province of Iran. Ocean and Coastal Management. Vol. 120, pp: 127-134.
16
Dmitrieva, L.; Kondakov, A.A.; Oleynikov, E.; Kydyrmanov, A.; Karamendin, K.; Kasimbekov, Y.; Baimukanov, M.; Wilson, S. and Goodman, J.S., 2013. Assessment of Caspian Seal by-catch in an illegal fishery using an interview based approach. PLoS One. Vol. 8, No. 6, pp: e67074.
17
Ermolin, I. and Svolkinas, L., 2016. Who owns sturgeon in the Caspian? New theoretical model of social responses towards state conservation policy. Biodiversity and Conservation. Vol. 25, pp: 2929-2945.
18
European Commission. 2006. Communication from the commission to the council and European parliament: Report from member states on behaviors which seriously infringed the rules of the common fisheries policy in 2006. Brussels: Commission of the European Communities. 247 p.
19
FAO. 2011. FishStat-Fishery Statistics. FAO, Rome.
20
FAO. 2014. The state of world fisheries and aquaculture. FAO, Rome.
21
Fazli, H., 2011.Stock assessment of the bony fishes in Iranian coastal waters of the Caspian Sea (2007-2010). Iranian Fisheries Research Organization. 90 p. (In Persian)
22
Gandiwa, E., 2011. Preliminary assessment of illegal hunting by communities adjacent to the northern Gonarezhou National Park, Zimbabwe. Tropical Conservation Science. Vol. 4, pp: 445-467.
23
IUCN (International Union for Conservation of Nature). 2011. IUCN Red List of Threatened Species, available online at www.iucnredlist.org/apps/redlist/search
24
Kao, S.M., 2015. International actions against IUU fishing and the adoption of national plans of action. Ocean Development & International Law. Vol. 46, pp: 2-16.
25
Öztürk, B., 2013. Some remarks of illegal, unreported and unregulated fishing in Turkish part of the Black Sea, BlackSea/Mediterranean Environment. 19: 256-267.
26
Petrossian, G.A., 2015. Preventing illegal, unreported and unregulated (IUU) fishing: A situational approach. Biological Conservation. Vol. 189, pp: 39-48.
27
Pikitch, E.K.; Doukakis, P.; Lauck, L.; Chakrabarty, P. and Erickson, D.L., 2005. Status, trends and management of sturgeon and paddlefish fisheries. Fish and Fisheries. Vol. 6, pp: 233-265.
28
Pitcher, T.; Kalikoski, D.; Pramod, G. and Short, K., 2009. Not honoring the code. Nature. Vol. 457, No. 5, pp: 658-659.
29
Pires, S.F. and Clarke, R.V., 2011. Sequential foraging, itinerant fences and parrot poaching in Bolivia. British Journal of Criminology. Vol. 51, pp: 314-335.
30
Pires, S.F. and Clarke, R.V., 2012. Are parrots CRAVED? An analysis of parrot poaching in Mexico. J of research in crime & delinquency. Vol. 49, No. 1, pp: 122-146.
31
Pramod, G. and Pitcher, T.J., 2006. An estimation of compliance of the fisheries of Namibia with article 7 (Fisheries Management) of the UN Code of Conduct for Responsible Fishing. University of British Columbia, Fisheries Center Research Reports.
32
Santos, R.A., 1999. Cronbach's alpha: A tool for assessing the reliability of scales. J of Extension. Vol. 37, pp: 35-39.
33
Teh, L. and Teh, L., 2012. Determination of fishery and socio-economic effects of SIMCA on local fishing communities & evaluation of the effects of reserve protection on reef fish size and abundance. Malaysia, USAID Project Number: GCP LWA Award. LAG-A-00-99-00048-00.
34
Varkey, D.A.; Ainsworth, C.H.; Pitcher, T.J.; Goram, Y. and Sumaila, R., 2010. Illegal, unreported and unregulated fisheries catch in Raja Ampat regency, Eastern Indonesia. Marine Policy. Vol. 34, pp: 228-236.
35
Worm, B. and Branch, T.A., 2013. The future of fish. Trends in Ecology & Evolution. Vol. 27, No. 11, pp: 594-599.
36
Wright, B.R.E.; Caspi, A.; Moffitt, T.E. and Paternoster, R., 2004. Does the perceived risk of punishment deter criminally prone individuals? Rational choice, self-control, and crime. Journal ofResearchin Crime and Delinquency.Vol.41, No. 2, pp: 180-213.
37
Yea, Y. and Valbo-Jorgensen, J., 2012. Effects of IUU fishing and stock enhancement on and restoration strategies for the stellate sturgeon fishery in the Caspian Sea. Fisheries Research. Vol. 131-133, pp: 21- 29.
38
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی ریسک اکولوژیک آبزی پروری در نواحی ساحلی دریای خزر (مطالعه موردی: مزرعه پرورش ماهیان خاویاری مروارید، قروق، تالش)
امروزه با افزایش جمعیت میزان تولیدات در بخش آبزی پروری در سطح جهانی در حال گسترش است. این صنعت به عنوان یک صنعت نو ظهور خطرات بالقوه ای را متوجه محیط زیست می کند. استفاده از رویکردهای ارزیابی ریسک روش بسیار مناسبی برای مدیریت تنش های وارده از این صنعت بر محیط زیست است. علم ارزیابی ریسک در زمینه آبزی پروری بسیار جدید بوده و در سطح جهانی از قدمت بالایی برخوردار نیست. از مهم ترین سازمان های که در این زمینه فعال هستند عبارتند از EPA, FAO / UNESCO-IOC / WMO / WHO / IAEA / UN / UNEP GESAMP (IMO). در بررسی حاضر از دستورالعمل ارزیابی ریسک اکولوژیک برای صنعت آبزی پروری که مورد تایید آژانس حفاظت محیط زیست آمریکا (EPA) استفاده گردید. بر طبق ارزیابی انجام گرفته پرورش ماهیان خاویاری در مزارع پرورش قروق تالش بر روی کیفیت اکوسیسم پذیرنده (رودخانه کرگانرود و دریای خزر ) به ترتیب از جهت عوامل بیماری زا دارای پتانسیل ریسک بالا، مواد دارویی و ضدعفونی دارای پتانسیل ریسک شدید و برای مواد الی و مغذی دارای پتانسیل ریسک میانه است(میانه بودن ریسک عوامل انتهایی را میتوان به توان خودپالایی رودخانه معطوف کرد) که در اقدامات مدیریتی نظارت و پایش مستمر را می طلبد. بررسی توان خودپالایی رودخانه و هم چنین وضعیت جوامع گیاهی و جانوری اکوسیستم های تحت تاثیر می تواند دقت ارزیابی را افزایش داده و تصمیمات مدیریتی صحیح تری را موجب شود.
http://www.aejournal.ir/article_132335_cdd95cd4acce479fdec394ca36ba8384.pdf
2021-04-21
279
288
10.22034/aej.2021.132335
ارزیابی ریسک اکولوژیک
EPA
صنعت آبزی پروری
مزرعه پروش ماهیان خاویاری
قروق
تالش
حبیب
حسین پور رودسری
1
گروه منابع طبیعی و محیط زیست، داﻧﺸﮕﺎه آزاد اﺳﻼﻣﯽ، واﺣﺪ ﻋﻠﻮم و ﺗﺤﻘﯿﻘﺎت تهران، تهران، اﯾﺮان
AUTHOR
سیدمسعود
منوری
monavarism@yahoo.com
2
گروه منابع طبیعی و محیط زیست، داﻧﺸﮕﺎه آزاد اﺳﻼﻣﯽ، واﺣﺪ ﻋﻠﻮم و ﺗﺤﻘﯿﻘﺎت تهران، تهران، اﯾﺮان
LEAD_AUTHOR
حسین
خارا
hossein.khara1974@gmail.com
3
گروه شیلات، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
AUTHOR
بهروز
بهروزی راد
4
سازمان حفاظت محیط زیست ایران، تهران، ایران
AUTHOR
پناهنده، م.؛ مروتی، م. و منصوری، ن.ا.، 1395. ارزیابی ریسک اکولوژیک با تاکید بر سیستم اطلاعات تصمیم گیری تشخیص و آنالیز علت. نشر مجتمع آموزش عالی اردکان. 242 صفحه.
1
رضاخانی، ش.؛ محمدی زاده، ف.؛ خارا، ح.؛ بحری، ا.ه. و احمدنژاد، م.، 1399 .ارزیابی تنش اکسیژنی روی آسیب های بافت آبشش و طحال بچه ماهی دریای خزر. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 12، شماره 3، صفحات 229 تا 241.
2
منوری، م.؛ دامنگیر، ع.ع. و اسدی، ع.ح.، 1390. ارزیابی ریسک اکولوژیک، انتشارات میترا. 376 صفحه.
3
ولیانی، ا.ر.؛ فقهی فرهمند، ن. و ایرانزاده، س.، 1399. ارائه مدل ترکیبی جهت ارزیابی ریسک های زیست محیطی استان مازندران با استفاده از روش های دیماتل و تابع زیان تاگوچی. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 12، شماره 1، صفحات 41 تا 47.
4
Anon. 2006. Report of the Study Group on Risk Assessment and Management Advice (SGRAMA). ICES Resource Management Committee, ICES CM 2006/RMC: 04, Ref LRC ACFM, ACE ACME 71. ICES, Copenhagen.
5
Asche F.; Guttormsen A.G. and Tveterås, S., 1999. Environmental problems, productivity and innovations in Norwegian salmon aquaculture. Aquaculture Economics & Management. Vol. 3 No. 1, pp 19-29.
6
Australian/New Zealand Standards. 1999. Standard for Risk Management AS/NZS 4360. Standards Association of Australia, Stratfield, NSW.
7
Black, K.D., 2001. Environmental Impacts of Aquaculture. Sheffield Academic Press, Sheffield, England.
8
Boesten, J.J.T.I.; K€opp, H.; Adriaanse, P.I.; Brock, T.C.M. and Forbes, V.E., 2007. Conceptual model for improving the link between exposure and effects in the aquatic risk assessment of pesticides. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 66, No. 3, pp: 291-308.
9
FAO. Food and Agriculture Organization of the United Nations. 2016b. FishStat Plus. Fishery statistical collections. Release: 2.12.5, by Berger T, Sibeni F, Calderini F. Italy, Rome. [Cited 10 Jun 2016.] Available from URL: http://www.fao.org/fishery/statistics/software/fishstatj /en
10
Fletcher, W.J., 2014. Review and refinement of an existing qualitative risk assessment method for application within an ecosystem-based management framework. ICES Journal of Marine Science. pp: 1-14.
11
Franco, A.; Price, O.R.; Marshall, S.; Jolliet, O.; Van den Brink, P.J. and Rico, A., 2017. Towards refined environmental scenarios for ecological risk assessment of down-the-drain chemicals in freshwater environments. Integrated Environmental Assessment and Management. Vol. 13, No. 2, pp: 233- 248.
12
GESAMP(IMO/FAO/UNESCO/IOC/WMO/WHO/IAEA /UN/UNEP Joint Group of Experts on the Scientific Aspects of Marine Environmental Protection). 2001. Planning and management for sustainable coastal aquaculture development. Rep. Stud. GESAMP. Vol. 68, 90 p.
13
GESAMP. 2008. Assessment and communication of environmental risks in coastal aquaculture. IMO/FAO /UNE SCO-IOC/UNIDO/WMO/IAEA/UN /UNEP Joint Group of Experts on Scientific Aspects of Marine Environmental Protection. Reports and Studies GESAMP No. 76. FAO, Rome. 198 p.
14
Haimes, Y.Y., 2009. Risk Modelling, Assessment, and Management, Third Edition edn, John Willey & Son, Inc.
15
Hambray, J. and Southall, T., 2002. Environmental Risk Assessment and Communication in Coastal Aquaculture. Joint Group of Experts on the Scientific Aspects of Marine Environmental Protection, GESAMPWG31. FAO, Rome, Italy.
16
Hayes, K.R., 1997. A Review of Ecological Risk Assessment Methodologies. CRIMP Technical Report No. 13. CSIRO, Hobart, Tasmania, Australia.
17
Hindar, K.; Fleming, I.A.; McGinnity, P. and Diserud, A., 2006. Genetic and ecological effects of salmon farming on wild salmon: modeling from experimental results. ICES Journal of Marine Science. Vol. 63, pp: 1234-1247.
18
Holsman, K.; Samhouri, J.; Cook, G.; Hazen, E.; Olsen, E. and Dillard, M., 2017. An ecosystem-based approach to marine risk assessment. Ecosyst. Health Sustainabil. Vol. 3, pp: 1256.
19
Holmer, M.; Wildish, D. and Hargrave, B., 2005. Environmental effects of marine finfish aquaculture. In Handbook of environmental chemistry, pp: 181-206. Ed. by Hargrave, B., Springer-Verlag, Berlin.
20
Kim, H.Y.; Lee, I.S. and Oh, J.E., 2017. Human and veterinary pharmaceuticals in the marine environment including fish farms in Korea. Sci. Total Environ. Vol. 579, pp: 940-949.
21
Kutti, T.; Ervik, A. and Hansen, P.K., 2007a. Effects of organic effluents from a salmon farm on a fjord system. I.Vertical export and dispersal processes. Aquaculture. Vol. 262, pp: 367-381.
22
Naylor, R.L.; Goldburg, R.J.; Mooney, H.; Beveridge, M.; Clay, J.; Folke; C., Kautsky, N.; Lubchenco, J., Primavera. J. and Williams, M., 1998. Nature’s Subsidies to Shrimp and Salmon Farming. Science. Vol. 282, pp: 883.
23
Lafferty, K.D.; Harvell, C.D.; Conrad, J.M.; Friedman, C.S.; Kent, M.L.; Kuris, A.M. and Saksida, S.M., 2015. Infectious diseases affect marine fisheries and aquaculture economics. Annual Review of Marine Science. Vol. 7, pp: 471-496.
24
Rico, A. and Van den Brink, P.J., 2014. Probabilistic risk assessment of veterinary medicines applied to four major aquaculture species produced in Asia. Science of the Total Environment. Vol. 468-469, pp: 630-641.
25
Serra-Llinares, R.M.; Bjørn, P.A.; Finstad, B.; Nilsen, R.; Harbitz, A.;Berg, M. and Asplin, L., 2014. Salmon lice infection on wild salmonids in marine protected areas: an evaluation of the Norwegian "National Salmon Fjords". Aquaculture Environment Interactions. Vol. 5, pp: 1-16.
26
Sharma, D. and Kansal, A., 2013. Assessment of river quality models: a review. Reviews in Environmental Science and Biotechnology. Vol. 12, pp: 285-311.
27
Snow, M.; Black, J.; Matejusova, I.; McIntosh, R.; Baretto, E.;Wallace, I.S. and Bruno, D.W.,2010. Detection of salmonid alphavirus RNA in wild marine fish: implications for the origins of salmon pancreas disease in aquaculture. Diseases of Aquatic Organisms. Vol. 91, pp: 177-188.
28
Standards Australia. Risk management-guidelines on risk assessment techniques. HB 89. 2012. Standards Australia Limited, Sydney, Australia.
29
Taranger, G.L.; Svasand, T.; Kvamme, B.O.; Kristiansen, T.S. and Boxaspen, K.K., 2012a. Risk assessment of Norwegian aquaculture (In Norwegian). Fisken og havet. 131 pp.
30
UNEP. 2010. Environmental assessment in the WIO Region: An overview of the policy, legal, regulatory and institutional frameworks related to Environmental Impact Assessment in the WIO Region. UNEP/Nairobi Convention, 81 p.
31
USEPA. 1998. Guidelines for Ecological Risk Assessment. EPA/630/R-95/002F. U.S. Environmental Protection Agency, Washington DC. Federal Register 63, 26846-26924. Available online at: http://www.epa. gov/raf/publications /pdfs/Ecotxtbx.Pdf.
32
Van den Bogaard, A.E. and Stobberingh, E.E., 2000. Epidemiology of resistance to antibiotics: links between animals and humans. Int. J. Antimicrob. Agents. Vol. 14, pp: 327-335.
33
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی یونی و اسمزی در ماهیان خاویاری نورس در انتقال مستقیم به آب دریای خزر
هدف از این مطالعه انتقال مستقیم چهارگونه از بچه ماهیان خاویاری (فیل ماهی، قره برون، تاس ماهی روسی و شیب) حاصل از تکثیر مصنوعی به آب دریای خزر بود. ماهیان در چهار گروه سنی (35، 50 و 65 روزه) و در سه غلظت آب شور (0/5، 9/5 و 12/5 گرم در هزار) بررسی شدند. بچه ماهیان مستقیماً از آب شیرین به آب لب شور منتقل شدند. پس از 168 ساعت، نمونه برداری از خون ماهیان به عمل آمد. نتایج نشان داد که بازماندگی در تمام گروه ها از 65 تا 100درصد بود و با افزایش سن و وزن ماهی افزایش یافت. برخی از پارامترهای خونی، سطح کورتیزول، اسمولاریته و غلظت یون ها در پلاسما تعیین شد. سطوح عملکردی مکانیسم هموستاز اسمزی و یونی در همه گروه ها مشابه بود (0/05<p )، اما در شوری های مختلف متفاوت بود (0/05>p ). اختلاف معنی داری بین سطح غلظت یون پلاسما در محیط های مختلف مشاهده شد (0/05>p ). غلظت یون های سدیم، پتاسیم و کلسیم در پلاسما بالاتر از محیط آب شیرین و کم تر از محیط آب لب شور بود (0/05>p ). غلظت منیزیم پلاسما کم تر از آب شیرین و لب شور بود. با افزایش شوری محیط، هماتوکریت، هموگلوبین، حجم گلبول قرمز، متوسط هموگلوبین گلبولی و اسمولاریته پلاسما کاهش و غلظت متوسط هموگلوبین گلبولی و سطح کورتیزول پلاسما افزایش داشته است (0/05>p ). اما تعداد گلبول های سفید و قرمز تغییر نکرد (0/05<p ) و به حالت پایدار رسید. در نتیجه امکان رهاسازی مستقیم ماهیان خاویاری نورس با افزایش وزن و سن از آب شیرین به آب لب شور وجود دارد.
http://www.aejournal.ir/article_133750_231a84feab75dcaf779976195a173483.pdf
2021-04-21
289
298
10.22034/aej.2021.133750
ماهیان خاویاری نورس
دریای خزر
یون
کورتیزول
اسمولاریته
سید محمد وحید
فارابی
smv_farabi@hotmail.com
1
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران
LEAD_AUTHOR
محمود
بهمنی
mahmoud_bahmani@ymail.com
2
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
منصور
شریفیان
sharif_23m@yahoo.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
مهدی
گل آقایی درزی
4
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران
AUTHOR
ایمانپور، م.ر.، 1378. بررسی عادات غذائی و میزان مرگ و میر بچه ماهیان قره برون رهاسازی شده به گرگان رود. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 72 صفحه.
1
ایمانپور، م.ر.، 1384. اثرات طیف نور، دوره های نوری و غنی سازی روی پرورش لاروی و تنظیم اسمزی بچه ماهیان سفید. رساله دکتری شیلات. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 108 صفحه.
2
پالینوف، ا.ل. و گارلوف، پ.ا.، 1972. اطلاعات مقدماتی در مورد وضعیت هیپوفیز عصبی در تاس ماهیانی که از آب دریا به آب شیرین منتقل می شوند. گزارش از اجلاس سینیورخ، 1972، 189 صفحه، بازسازی ذخائر تاس ماهیان در حوضه های دریای خزر و آزوف، دریای سیاه. مترجم نظری، ف.، 1380. انتشارات مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 228 صفحه.
3
ترنکلر، ی.و. و استپانووا، ر.ن.، 1983. فیل ماهی موضوع پرورش در قفس در خزر جنوبی، اصول بیولوژیک تاس ماهی پروری، مسکو، علوم صفحات 150 تا 157. بازسازی ذخائر تاس ماهیان در حوضه های دریای خزر و آزوف،دریای سیاه. مترجم نظری، ف.، 1380. انتشارات مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 228 صفحه.
4
حافظ امینی، پ. و عریان، ش.، 1381. بررسی اثرات ناشی از استرس کلرید سدیم روی هماتوکریت و هموگلوبین خون در ماهی کپور معمولی (carpioCyprinus). مجله علمی شیلات ایران. دوره 11، شماره 3، صفحات 13 تا 22.
5
عادلی، ا.، 1396. ارزیابی مدیریت بهره برداری ماهیان خاویاری در سواحل ایرانی دریای خزر (1306-1393). مجله علمی شیلات ایران. سال 27، شماره 1، DOI: 1022092/ISFJ.2018.116757
6
عامری مهابادی، م.، 1378. روش های آزمایشگاهی هماتولوژی دامپزشکی. انتشارات دانشگاه تهران. 126صفحه.
7
دوبروفسکایا، ن.س. و رونکینا، د.ل.، 1981. تاثیر حمل و نقل بر وضعیت فیزیولوژیک بچه تاس ماهیان و بچه ازون برون ها. اصول صحیح پرورش تاس ماهیان. ولگاگراد، صفحات 80 تا 81. بازسازی ذخائر تاس ماهیان در حوضه های دریای خزر و آزوف، دریای سیاه. مترجم نظری، ف.، 1380. انتشارات مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 228 صفحه.
8
دوبینین، و.ی. و دولیدزه، ی.ب.، 1979. روند مهاجرت بچه ماهیان تکثیری. در کتاب شیلات آب های داخلی اتحاد جماهیر شوروی، آستاراخان. صفحات 77 تا 78. استاندارد وزن و سن بچه ماهیان خاویاری به منظور رهاسازی. مترجم: امانی، ق.ع.؛ عبدالملکی، ش.، انتشارات مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 1382. 216 صفحه.
9
طبرستانی، م.، 1364. خون شناسی پزشکی. سازمان چاپ و نشر مشهد. 952 صفحه.
10
دوبین، و.پ. و کیسیلیوا، س.گ.، 1983. سازگاری بچه تاس ماهیان نسبت به آب دریا در درجات مختلف دمائی و غذادهی، اصول بیولوژیک تاس ماهی پروری، مسکو. صفحات 167 تا 178. بازسازی ذخائر تاس ماهیان در حوضه های دریای خزر و آزوف، دریای سیاه. مترجم نظری، ف.، 1380. انتشارات مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 228 صفحه.
11
ریکووا . ی.ن.، 1987. شاخص درجه شوری برای ارزیابی وضعیت بچه تاس ماهیان هنگام رهاسازی آن ها از استخرها و حمل به دریا. مسکو: انستیتو علمی بین المللی ماهی شناسی و اقیانوس شناسی. بازسازی ذخائر تاس ماهیان در حوضه های دریای خزر و آزوف، دریای سیاه. مترجم نظری، ف.، 1380. انتشارات مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. صفحات 115 تا 127.
12
فارابی، س.م.و. و رمضانی، ح.، 1384. بررسی مراحل رشد لاروی، بچه ماهی نورس و انگشت قد فیل ماهی در تکثیر و پرورش مصنوعی جهت بازسازی ذخائر. ششمین همایش علوم و فنون دریائی و اولین همایش آبنگاری ایران. 219 صفحه.
13
کارزینکین، گ.س.، 1942. پاره ای اطلاعات در زمینه پرورش بچه ماهیان مهاجر. مجله جانورشناسی. جلد 11، جزوه 5، ، صفحات 62 تا 69. بازسازی ذخائر تاس ماهیان در حوضه های دریای خزر و آزوف، دریای سیاه. مترجم نظری، ف.، انتشارات مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 115 صفحه.
14
کاظمی، ر.؛ بهمنی، م.؛ پورکاظمی، م. و مجازی امیری. ب.، 1381. بررسی سیستم اسمزی در تاس ماهی ایرانی Acipenser persicus. مؤسسه تحقیقات شیلات ایران، انستیتو تحقیقات بین المللی ماهیان خاویاری. 77 صفحه.
15
گرانسر، ع.، 1379. بیوشیمی بالینی و آزمایشگاهی. انتشارات چهر. 308 صفحه.
16
لوکیانینکو، و.ی.؛ کاسیموف، ر.ی. و کاکوزا، آ.آ.، 1984. استاندارد رشد و وزن بچه ماهیان کارگاهی. ولگاگراد. 229 صفحه. بازسازی ذخائر تاس ماهیان در حوضه های دریای خزر و آزوف، دریای سیاه. مترجم نظری، ف.، 1380. انتشارات مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 85 صفحه.
17
ملکنیا، ن.، 1380. کتاب جامع الایزا. معاونت فنی شرکت تولیدی تحقیق گستر. نشر کتاب میر. چاپ سیاوش. صفحات 143 تا 154.
18
ودمیرگری، آ.، 2001. فیزیولوژی ماهی در سیستم های پرورش متراکم. ترجمه عبدالله مشائی، م.، انتشارات معاونت تکثیر و پرورش آبزیان. اداره کل آموزش و ترویج. 302 صفحه.
19
Altinok, I.; Galli, S.M. and Chapman, F.A., 1998. Ionic and osmotic regeulation capabilities of juvenil Gulf of Mexico sturgeon, Acipenser oxyrinchus de sotoi. Comparative Biochemistry and physiology part A. Vol. 120, pp: 609-616.
20
Amini, K.; Rostami, A.M. and Jorjani, M., 2006. Investigation of osmoregulation system in Iranian sturgeon (Acipenser persicus) released in the Gorgan River.5th International Symposiom on Sturgeon.General biology life history.GB1. 328 p.
21
Cataldi, E.; Di Marco, P.; Mandich, A. and Cataudella, S., 1998. Serum parameters of Adriatic sturgeon Acipenser naccarii (Pisces: Acipenseriformes): effects of temperature and stress. Comp. Biochem. Physiol A. Vol. 121, pp: 351-354.
22
Doroshov, S., 1985. The biology and culture of sturgeon. In: Recent advance in aquaculture, (Eds. Muir, J. and Roberts, R.,) Croon Helm publ. London.
23
He, X.; Zhuang, P.; Zhang, L. and Xie, C., 2009. Osmoregulation in juvenile Chinese sturgeon (Acipenser sinensis Gray) during brackish water adaptation. Fish Physiology and Biochemistry, DOI: 10.1007/s10695-008 9230-5
24
Heggberget, T.G.; Staurnes, M.; Strand, R. and Husby, J., 1992. Smoltification in salmonids. NINA Norsk Institutt for Naturforskning Forskningsrapport. Vol. 31, pp: 3-42.
25
Howell, B.R., 1994. Fitness of hatchery reared fish for survival in the sea. Aquaculture and Fisheries Management. Vol. 25, No. 1, pp: 3-17.
26
Ivanov, V.P.; Vlasenko, A.D.; Khodorevskaya, R.P. and Raspopov, V.M., 1999. Contemporary status of Caspian sturgeon stock and its conservation. J.Appl. Ichthyol. Vol. 15, pp: 103-105.
27
Jabbarzadeh Shiadeh, S.M.; Mojazi Amiri, B.; Abtahi, B. and Nazari, R.M., 2000. Study on the changes of some physiological factors during osmoregulation of juvenile Persian sturgeons (Acipenser persicus). Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 2, No. 1, pp: 61-74.
28
Keshtkar Langerudi, E.; Jamili, Sh.; Ramezani-Fard, E. and Khoshnood, Z., 2020. Osmoregulation, endocrine capability, and histopathological alteration of starry sturgeon (Acipenser stellatus) fry after transfer to Brackish Water. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 20, No. 2, pp: 449-462.
29
Khodorevskaya, R.P. and Novikova, A.S., 1995. Status of beluga sturgeon, Huso huso, in the Caspian Sea. Journal of Ichthyology. Vol. 35, No. 9, pp: 59-68.
30
Krayushkina, L.S., 1983. Level of development of osmoregulatory system of young sturgeons depends on size and age. In: Biological principles of sturgeon Fish_Farming. (Barannikova, I.A. and Berdichevski, M.A., Eds.) Moscow: Science. pp: 158-166 (in Russian).
31
Krayushkina, L.S., 1999. Adaptation of brackish water and fresh water sturgeons to hyperosmotic media.st. Petersburg state (Russia).
32
Krayushkina, L.S., 2005. Evolution of mechanisms of osmotic and ionic regulation in a number of acipenserids. 5th International Symposiom on Sturgeon.General biology life history.GB13. 328 p.
33
Krayushkina, L.S. and Semenova, O.G., 2004. Feature of osmotic regulation in Caspian Acipenserids.proceeding of the fourth international Iran and Russia Conference, In the shahrecord. pp: 1501-1505.
34
Krayushkina, L.S. and Semenova, O.G., 2006. Osmotic and ion regulation in different species of Acipenserids (Acipenseriformes, Acipenseridae). J. Ichthyol. Vol. 46, No. 1, pp: 108-119.
35
Legeza, M.I., 1970. Quantitative distribution of sturgeons (family Acipenseridae) in the Caspian Sea. TSNIORKH Proceedings Vol.2. Food Industry. pp: 57-63.
36
Martinez Álvarez, R.M.; Hidalgo, M.C.; Domezain, A.; Morales, A.E.; García Gallego, M. and Sanz, A., 2002. Physiological changes of sturgeon Acipenser naccarii caused by increasing environmental salinity. Journal of Experimental Biology. Vol. 205, pp: 3699-3706.
37
McDonald, D.G. and Milligan, C.L., 1992. Chemical properties of the blood. In Fish Physiology, Vol. XIIB (ed. Hoar, W.S.; Randall, D.J. and Farrell, A.P.,), pp: 56-133. London: Academic Press.
38
McKenzi, D.J.; Cataldi, E.; Di Marco, P.; Mandlich, A.; Romano, P.; Ansferri, S.; Bronzi, P. and Cataudella, S., 1999. Some aspects of osmotic and ionic regulation in Adriatic sturgeon Acipenser naccarii. II: Morpho physiological adjustments to hyperosmotic environment. J. Appl. Ichthyol. Vol. 15, pp: 61-66.
39
Nasri Tajan, M. and Zohrabi, M., 2019. Determination of some hematological and biochemical parameters of Cultured Stellate sturgeon (Acipenser stellatus) and Ship sturgeon (Acipenser nudiventris) the changes age and Sex dependent. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 13, No. 2, pp: 125-137.
40
Olla, B.L.; Davis, M.W. and Ryer, C.H., 1998. Understanding how the hatchery environment represses or promotes the development of behavioural survival skills. Bulletin of Marine Science. Vol. 62, pp: 531-550.
41
Olson, K.R., 1998, The cardiovascular system. In: Evans. D. H, editor. The physiology of fishes. Boca Raton: CRC Press. pp: 129-154.
42
Plaut, I., 1998. Comparison of salinity tolerance and osmoregulation in two closely related species of blennies from different habitats. Fish Physiol. Biochem. Vol. 19, pp: 181-188.
43
Pourkazemi, M., 1999. Problems Associated in Sustainable Management of Sturgeon in the Caspian Sea. Journal of Sustainable Use. Specific Aspect of Sustainable Use of Other Aquatic Resources. http:// IWMC.org.2nd Symposium. Aquatic Resources.htm.
44
Pourkazemi, M., 2006. Caspian Sea Sturgeon Conservation and Fisheries: Past, Present and Future. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, No. 1, pp: 12-16. DOI:10.1111/j.1439 0426.2007.00923.x.
45
Sanchez de Lamadrid, A.; Garcia Gallego, M.; Sanz, A.; Munos, J.L.; Domezain, J.; Soriguer, M.C.; Domezain, A., and Hernando, J.A., 1998. Acclimation of the sturgeon, Acipenser naccarii Bonaparte 1836 to saltwater: Effect of age and weight. 6 p.
46
Suboski, M.D. and Templeton, J.J., 1989. Life skills training for hatchery fish: social learning and survival. Fisheries Research (Amsterdam). Vol. 7, pp: 343-352.
47
Tomas, L., 1998. Clinical laboratory diagnostics.1st ed. Frankfurt: TH Books Verlagsgesellschaft. pp: 231-241.
48
Wallace, J.C. and Asgord, D., 1984. An investigation of the consequences of egg size for the culture of arctic charr, Salvelinus alpinus (L). J. Fish Biol. Vol. 24, pp: 427-435.
49
Wang, Y.S.; Gonzalez, R.J.; Patrick, M.L.; Grosell, M.; Zhang, C.; Feng, Q.; Du, J.; Walsh, P.J. and Wood, C.M., 2003. Unusual physiology of scale less carp Gymnocypris przewalskii in Lake Qinghai: Ahigh altitude alkaline saline lake. Comparitive Biochemistery and Physiology Part A. Vol. 134, pp: 409-421.
50
ORIGINAL_ARTICLE
اثر به کارگیری گیاه بولاغ اوتی (Nasturtium officinale) بر ماندگاری و رشد لاروها ماهی قزل آلای رنگین کمان (Onchorynchus mykiss) در یک سیستم کشت توام گیاه و ماهی مدار بسته
به نظر می رسد که از گیاه بولاغ اوتی می توان در یک سازگان توام پرورش لارو ماهی قزل آلای رنگین کمان به صورت مدار بسته برای ایجاد یک سازگان متعادل بوم سازگانی بهره برد. برای این منظور و در قالب یک طرح کاملآ تصادفی تاثیر وجود تراکم های مختلف گیاه بولاغ اوتی بر رشد و ماندگاری آلوین های ماهی قزل آلای رنگین کمان در یک سازگان مدار بسته پرورش ماهی مورد بررسی قرار گرفت. تیمارهای آزمایش را مقادیر مختلف 0، 20، 40 و 60 گرم گیاه بولاغ اوتی در بخش هایدروپونیک با سه تکرار تشکیل دادند. میزان ماندگاری لاروها در تیمار با 60 گرم گیاه اختلاف معنی داری (P≤0/05) را با سایر تیمارها نشان داد و کم تر از سایر تیمار ها بود. تعداد ماهیان از تعداد 20 قطعه در شروع آزمایش به 1/24±15 قطعه در پایان آزمایش رسید. با شروع آزمایش و غذا دهی ماهیان میزان هدایت الکتریکی آب افزایش یافت ولی اختلاف معنی داری را دربین تیمارها نشان نداد (P>0/05). بیش ترین و کم ترین مقدار هدایت الکتریکی آب به ترتیب در تیمارهای صفر و 20 گرم و به مقدار 60/51±594 و 82/31±580 میکرو زیمس اندازه گیری شد. ظرفیت آنتی اکسیدانی آب در تیمار حاوی 40 گرم گیاه دارای بیش ترین و در تیمار حاوی 60 گرم گیاه دارای کم ترین مقدار بود و مقدار آن به ترتیب در تیمار 40 و 60 گرم گیاه و به 15/90±544/75 و 15/90±14/75 میکرو مول در لیتر در پایان آزمایش رسید. نتایج به دست آمده، نشان داد تعادل مناسبی بین تعداد گیاه وارد شده به سازگان پرورشی و تراکم ماهیان برای تولید متابولیت های مورد نیاز گیاه برای رشد وجود ندارد و بولاغ اوتی برای رشد بهینه به غلظت بالایی از مواد معدنی نیاز دارد.
http://www.aejournal.ir/article_133785_87e54f8bb149d8fbf7f80b555c3c33bf.pdf
2021-04-21
299
304
10.22034/aej.2021.133785
گیاه بولاغ اوتی
ویتامین ث
ظرفیت آنتی اکسیدانی
ماهی قزل آلای رنگین کمان
کشت توام ماهی و گیاه
غلامرضا
رفیعی
ghrafiee@ut.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
فایزه
حجتی
hojat.f@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
هاجر
سعیدی
saeidi.h@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
رمضانی، ح.؛ دادگر، ش. و قدیری ابیانه، م.، 1397. بررسی تاثیر رشد ماهی قزل آلای رنگین کمان پرورشی (Oncorhynchus mykiss) در مرحله پرواری با استفاده از مکمل گیاهی. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 11، شماره 2، صفحات 206 تا 197.
1
علیزاده چاری، ح.؛ اکرمی، ر.؛ قلیچی، ا. و ابراهیمی، پ.، 1398. تجویز خوراکی اسانس اسطوخودوس Lavandula officinalis بر شاخص های رشد، خونی و ایمنی ماهی قزل آلای رنگین کمان Oncorhynchus mykiss. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 11، شماره 4، صفحات 197 تا 206.
2
APHA (American Public Health Association American). 1980. Water Works Association and Water Pollution Control Federation. Standard methods for experimentation of water and wastewaters, 15th edition. American public Health Association, Washington.
3
Benzie, I.F. and Strain, J.J., 1996. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of antioxidant power: the FRAP assay. Analytical Biochemistry. Vol. 239, No. 1, pp: 70-86.
4
Bidwell, R.G.S., 1974. Plant Physiology, Macmillan, New York, NY, 643 pp. Casey, H., 1977. Origin and variation of nitrate-nitrogen in the chalk springs, streams and rivers in Dorset, and its utilization by higher plants. Progress in Water Technology. Vol. 8, pp: 225-235.
5
Buta, N.; Popa, N.; Roman, L.; Bordea, G.; Bordea, A. and Bordea, N., 2013. The antioxidant effect of Melissa officinalis extract regarding the sunflower oil used in food thermal aplications. Journal of Material Processing Technolog. Vol. 19, No. 2, pp: 276-279.
6
Gloger, C.K.; Cotner, B.J.; Cole, M.W.M.; Rakocy, J.E.; Baily, D.S. and Shultz, K., 1995. A contribution of lettuce to waste water treatment capacity of raft hydroponics in a closed recirculating fish culture system. Aquaculture Engineering and Waste Management, Proceedings from the Aquaculture in the mid-Atlantic conference. Washington, D. C. June 24-28,
7
Lewis, W.M.; Yopp, J.H.; Schramm, H.L. and Brandenbrug, A.M., 1978. Use of hydroponics to maintain water quality of recirculated water in a fish culture system. Transactions of the American Fisheries Society. Vol. 107, No. 1, pp: 92-99.
8
Miron, T.L.; Herrero, M. and Ibáñez, E., 2013. Enrichment of antioxidant compounds from Lemon Balm (Melissa officinalis) by pressurized liquid extraction and enzyme- assisted extraction, Journal of Chromatography A. Vol. 1288, pp: 1-9.
9
Naegel, L.C.A., 1977. Combined production of fish and plants in re-circulating water. Aquaculture. Vol. 10, pp: 17-24.
10
Pierce, B., 1980. Water reuses aquaculture systems in two green houses in northern Vermont. Proc. World Mari culture Society. Vol. 11, pp: 18-127.
11
Quillere, I.; Marie, D.; Roux, L.; Gosse, F. and Morot Gaudry, J.F., 1993. An artifical productive ecosystem based on a fish/bacteria/plant association. 1. Design and management, Agriculture, Ecosystems & Environment. Vol. 47, pp: 13-30.
12
Rakocy, J.E., 2000. Integrating tilapia culture with vegetable hydroponics in recirculating systems, Journal of World Aquaculture Society. Vol. 1, No. 1, pp: 163-184.
13
Rafiee, G.R. and Saad, C.R., 2005. Nutrient cycle and sludge production during different stage of red tilapia (Oreochromis sp.) growth in a recirculating aquaculture system. Aquaculture. Vol. 244, pp: 109-118.
14
Render, B.D. and Stickney, R.R., 1997. Acclimation to ammonia by Tilapia aurea. Transactions of the American Fisheries Society. Vol. 108, No. 4, pp: 383-388.
15
Seawright, D.E., 1993. A method for investigating nutrient dynamics in integrated aquaculture, hydroponics systems. In: Wang, J.K. (Ed.), Techniques for Modern Aquaculture. Proceedings of a Conference, 21-23 June (1993), Spokane, WA. pp: 137-147.
16
Yanishlieva-Maslarova, N.V., 2001. Inhibiting oxidation, in: Pokorny, J.; anishlieva, N. and Gorden, M., (Eds.), Antioxidants in Food. Woodhead Publishing Ltd. Cambridge, UK. pp: 22-70.
17
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تنوع متاژنوم قارچی سیستم مداربسته و بیوفلاک پرورش ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) با استفاده از ITS2
استفاده از روش های فیلوژنتیک مولکولی جهت پیشرفت علم سیستماتیک و شناسایی تنوع قارچی بسیار پرکاربرد است. در میان مارکرهای فیلوژنتیک، ژن ITS به دلیل مناسب بودن برای بارکد کردن و داشتن اطلاعات زیاد به عنوان یکی از برجسته ترین روش های مطالعه جوامع قارچی معرفی شده است. هدف از این تحقیق ایجاد چارچوبی فیلوژنتیک به عنوان آغازی برای طبقه بندی قارچ ها و تجزیه و تحلیل جوامع آن ها در سیستم های آبزی پروری است. در این مطالعه بعد از یک دوره دو ماهه پرورش ماهی کپور معمولی (0/3 ± 21/5 گرم)، کیفیت آب و جامعه قارچی سیستم های پرورشی شامل بیوفلاک و مداربسته مورد ارزیابی قرار گرفتند. نتایج حاصل از پارامترهای کیفی آب اختلاف معنی دار نشان داد (0/05>p) هم چنین از لحاظ کیفیت آب هر دو سیستم شرایط مطلوبی را برای زیست ماهی فراهم نمودند. از لحاظ شناسایی جمعیت قارچی قسمت بزرگی از این جمعیت ها ناشناخته است و تنها گونه شناخته شده و غالب در هر دو سیستم مورد بررسی Homophron spadiceum است. بنابراین از لحاظ جوامع و گونه های شناخته شده تفاوتی مشاهده نگردید.
http://www.aejournal.ir/article_133827_9a1a6ff53bbb75bbbf2fe5ae5037f18d.pdf
2021-04-21
305
312
10.22034/aej.2021.133827
بیوفلاک
مداربسته
قارچ
ITS
سیستم پرورش ماهیان
کپور معمولی
مونا
تبرک
monatabarrok@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
AUTHOR
جعفر
سیف آبادی
jseyfabadi@gmail.com
2
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
LEAD_AUTHOR
غلام رضا
صالحی جوزانی
gsalehi@abrii.ac.ir
3
گروه میکروبی، پژوهشگاه بیوتکنولوژی کشاورزی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
AUTHOR
حبیب اله
یونسی
hunesi@modares.ac.ir
4
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
AUTHOR
عبدلی، ا. و نادری، م.، 1387. تنوع زیستی ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر. تهران انتشارات علمی آبزیان. صفحات 242 تا 244.
1
محمودی، م.؛ حاجی مرادلو، ع. و دستار، ب.، 1397. بررسی کیفیت آب و رشد بچه ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) تحت تغذیه با جیره های حاوی سطوح مختلف پروتئین در سیستم بیوفلوک. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 10، شماره 3، صفحات 191 تا 198.
2
رفیعی، ر.، 1397. تنظیم نسبت های مختلف کربن به نیتروژن ورودی به سازگان مدار بسته پرورش از طریق غذا و ملاس برای تولید بیوفلاک و بررسی شاخص های رشد ماهی فیتوفاگ و کیفیت آب. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 10، شماره 3، صفحات 199 تا 206.
3
Acosta-Martınez, V.; Dowd, S.; Sun, Y. and Allen, V., 2008. Tagencoded pyrosequencing analysis of bacterial diversity in a single soil type as affected by management and land use. Soil Biol Biochem. Vol. 40, pp: 2762-2770.
4
Anderson, I.C. and Cairney, J.W.G., 2004. Diversity and ecology of soil fungal communities: increased understanding through the application of molecular techniques. Environ Microbiol. Vol. 6, pp: 769-779.
5
Avnimelech, Y., 2006. Bio-filters: the need for a new comprehensive approach. Aquacultural Engineering. Vol. 34, No. 3, pp: 172-178.
6
Avnimelech, Y., 2009. Biofloc technology: a practical guide book. The World Aquaculture Society, Baton Rouge, Louisiana, USA. 182 p.
7
Azim, M.E. and Little, D.C., 2008. The biofloc technology (BFT) in indoor tanks: water quality, biofloc composition, and growth and welfare of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture. Vol. 283, No. 1-4, pp: 29-35. doi: https://doi.org/10.1016/ j.aquaculture.2008.06.036.
8
Blaalid, R.; Carlsen, T.O.R.; Kumar, S.; Halvorsen, R.; Ugland, K.I.; Fontana, G. and Kauserud, H., 2012. Changes in the rootassociated fungal communities along a primary succession gradient analysed by 454 pyro sequencing. Mol Ecol. Vol. 21, pp: 1897-1908.
9
Brunty, J.; Bucklin, R.; Davis, J.; Baird, C. and Nordstedt, R., 1997. The influence of feed protein intake on tilapia ammonia production. Aquacultural Engineering. Vol.16, pp: 161-166. https://doi.org/10.1016/S0144-8609 (96) 01019-9.
10
Cardenas, E. and Tiedje, J.M., 2008. New tools for discovering and characterizing microbial diversity. Curr Opin Biotechol. Vol. 19, pp: 544-549.
11
Deng, M.; Chen, J.; Gou, J.; Hou, J.; Li, D. and He, X., 2018. The effect of different carbon sources on water quality, microbial community and structure of biofloc systems. Aquaculture. Vol. 482, pp: 103-110. 10.1016/j.aquaculture. 2017.09.030.
12
Ebeling, J.M.; Timmons, M.B. and Bisogni, J., 2006. Engineering analysis of the stoichiometry of photoautotrophic, autotrophic, and heterotrophic removal of ammonia–nitrogen in aquaculture systems. Aquaculture. Vol. 257, pp: 346-358. 10.1016/j.aquaculture.2006.03.019.
13
Ekasari, J. and Maryam, S., 2012. Evaluation of biofloc technology application on water quality and production performance of red tilapia Oreochromis sp. cultured at different stocking densities. Hayati Journal of Biosciences. Vol. 19, pp: 73-80. 10.4308/hjb.19.2.73.
14
Fell, J.W.; Boekhout, T.; Fonseca, A. and Sampaio J.P., 2001. Basidiomycetous yeasts. pp: 1-36. In: The Mycota VII. Systematics and Evolution. Part B. (Mclaughlin, D.J.; McLaughlin, E.G. and Lemke, P.A., eds.). Springer-Verlag, Berlin.
15
Gardes, M. and Bruns, T.D., 1993. ITS primers with enhanced specificity for Basidiomycetes application to the identification of mycorrhizae and rusts. Mol Ecol. Vol. 2, pp: 113-118.
16
Green, J.L.; Holmes, A.J.; Westoby, M.I.; Oliver, Briscoe, D.; Dangerfield, M.; Gillings, M. and Beattie A.J., 2004. Spatial scaling of microbial eukaryote diversity. Nature. Vol. 432, pp: 747-750, 10.1038/nature03034.
17
Griffiths, R.I.; Whiteley, A.S.; O’Donnell, A.G. and Bailey, M.J., 2000. Rapid method for coextraction of DNA and RNA from natural environments for analysis of ribosomal DNA & rRNA based microbial community composition. Appl environ microbiol. Vol. 66, pp: 5488-5491.
18
Hibbett, D.S. and Binder, M., 2001. Evolution of marine mushrooms. Biol. Bull. Vol. 201, pp: 319-322.
19
Horton, T.R. and Bruns, T.D., 2001. The molecular revolution in ectomycorrhizal ecology: peeking into the black-box. Mol Ecol. Vol. 10, pp: 1855-1871.
20
Iwen, P.C.; Hinrichs, S.H. and Rupp, M.E., 2002. Utilization of the internal transcribed spacer regions as molecular targets to detect and identify human fungal pathogens. Med Mycol. Vol. 40, pp: 87-109.
21
Ju, Z.Y.; Forster, I.; Conquest, L. and Dominy, W., 2008. Determination of microbial community structures of shrimp floc cultures by biomarkers and analysis of floc amino acid profiles. Aquaculture Research. Vol. 39, pp: 118-133. doi: https://doi.org/10.1111/j.1365-2109.2007.01856.x.
22
Kasan, A.N.; Ghazali, A.N.; Hashim, F.N. and Jouhari, H., 2018. 18s rDNA Sequence Analysis of Microfungi from Biofloc-based System in Pacific Whiteleg Shrimp, Litopenaeus vannamei Cultur. Biotechnology. Vol. 17, pp: 135-141.
23
Kirk, P.M.; Cannon, P.F.; David, J.C.; Stalpers, J., 2001. Ainsworth and Bisby’s Dictionary of the Fungi. 9th ed. CAB International, Wallingford, UK.
24
Kohlmeyer, J. and Kohlmeyer, E., 1979. Marine mycology: the higher fungi. New York: Academic.
25
Kõljalg, U.; Nilsson, R.H.; Abarenkov, K. and Tedersoo, L., 2013. Towards a unified paradigm for sequence based identification of fungi. Molecular Ecology. Vol. 22, pp: 5271-5277. https://doi.org/10.1111/mec.12481.
26
Legarda, E.C.; Poli, M.A.; Martins, M.A. and Pereira, S.A., 2019. Integrated recirculating aquaculture system for mullet and shrimp using biofloc technology. Aquaculture. Vol. 512, pp:734308. 10.1016/j.aquaculture. 2019.734308.
27
Luo, G.; Gao, Q.; Wang, C. and Liu, W., 2014. Growth, digestive activity, welfare, and partial cost-effectiveness of genetically improved farmed tilapia (Oreochromis niloticus) cultured in a recirculating aquaculture system and an indoor biofloc system. Aquaculture. Vol. 422, pp: 1-7. 10.1016/j. Aquaculture.2013.11.023.
28
Luque-Almagro, V.M.; Gates, A.J.; Moreno-Vivián, C. and Ferguson, S.J., 2011. Bacterial NO3-N assimilation: gene distribution and regulation. Portland Press Limited.
29
Manter, D.K. and Vivanco, J.M., 2007. Use of ITS primers, ITS1F and ITS4, to characterize fungal abundance and diversity in mixed-template samples by qPCR and length heterogeneity analysis. J Microbiol Methods. Vol. 71, pp: 7-14.
30
Martínez‐Córdova, L.R.; Emerenciano, M.; Miranda Baeza, A. and Martínez‐Porchas, M., 2015. Microbial‐based systems for aquaculture of fish and shrimp: an updated review. Reviews in Aquaculture. Vol: 7, pp: 131-148. doi: https://doi.org/10.1111/raq.12058.
31
Michaud, L., 2007. Microbial communities of recirculating aquaculture facilities: interaction between heterotrophic and autotrophic bacteria and the system itself. Scienze Ambientali: Ambiente Marino e Risorse”(XVIII CICLO): University of Messina.
32
Örstadius, L.; Ryberg, M. and Larsson, E., 2015. Molecular phylogenetics and taxonomy in Psathyrellaceae (Agaricales) with focus on psathyrelloid species: introduction of three new genera and 18 new species. Mycological Progress. Vol. 14, No. 25, pp: 1-42.
33
Peltoniemi, K.; Fritze, H. and Laiho, R., 2009. Response of fungal and actinobacterial communities to water-level drawdown in boreal peatland sites. Soil Biol Biochem. Vol. 41, pp: 1902-1914.
34
Piedrahita, R.H., 2003. Reducing the potential environmental impact of tank aquaculture effluents through intensification and recirculation. Aquaculture. Vol. 226, pp: 35-44.
35
Roesch, L.F.W.; Fulthorpe, R.R.; Riva, A. and Casella, G., 2007. Pyrosequencing enumerates and contrasts soil microbial diversity. ISME J. Vol. 1, pp: 283-290.
36
Schneider, O.; Blancheton, J.P.; Varadi, L.; Eding, E.H. and Verreth, J.A.J., 2007. Cost price and production strategies in European recirculation systems. Linking Tradition & Technology Highest Quality for the Consumer, Firenze, Italy, WAS.
37
Schoch, C.L.; Seifert, K.A.; Huhndorf, S.; Robert, V. and Spouge, J.L., 2012. Nuclear ribosomal internal transcribed spacer (ITS) region as a universal DNA barcode marker for Fungi. P Natl Acad Sci USA. Vol. 109, pp: 6241-6246.
38
Tacon, A.G.J. and Forster, I.P., 2003. Aqua feed and the environment: policy implications. Aquaculture. Vol: 226, pp: 181-189.
39
Vega, F.E.; Simpkins, A. and Aime, M.C., 2010. Fungal endophyte diversity in coffee plants from Colombia, Hawaii, Mexico and Puerto Rico. Fungal Ecol. Vol. 3, pp: 122-138.
40
Vilgalys, R. and Gonzalez, D., 1990. Organization of ribosomal DNA in the basidiomycete Thanatephorus praticola. Curr Genet. Vol. 18, pp: 277-280.
41
Wallander, H.; Johansson, U. and Sterkenburg, E., 2010. Production of ectomycorrhizal mycelium peaks during canopy closure in Norway spruce forests. New Phytol. Vol. 187, pp: 1124-1134.
42
Wasielesky, W.Jr.; Atwood, H.; Stokes, A. and Browdy, C.L., 2006. Effect of natural production in a zero exchange suspended microbial floc based super-intensive culture system for White shrimp Litopenaeus vannamei. Aquaculture. Vol. 258, pp :396-403.
43
White, T.J.; Bruns, T.D.; Lee, S.B. and Taylor, J.W., 1990. Amplification and direct sequencing of fungal ribosomal RNA genes for phylogenetics. PCR Protocols A Guide to Methods and Applications (Innis, M.A.; Gelfand, D.H.; Sninsky, J.J. and White, T.J., eds), pp: 315-322. Academic Press, San Diego, CA.
44
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه هم آوری مولدین ماده ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) پرورشی استانهای گیلان و مازندران و ارتباط آن با طول، وزن و سن مولدین
این تحقیق به منظور مقایسه هم آوری مولدین ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) پرورشی استان های گیلان و مازندران و ارتباط آن با طول، وزن و سن این مولدین انجام شد. بدین منظور از بهمن 96 تا آذر 97، 60 نمونه ماهی ماده مراحل 4 و 5 رسیدگی جنسی، از گیلان و مازندران (نمونه از هر منطقه) صید و بررسی گردید.میانگین وزن بدن و طول کل و سن ماهیان مولد گیلان و مازندران به ترتیب (0/99±4/22) کیلوگرم و (0/30 ± 3/13) کیلوگرم، طول کل (4/68 ± 57/33) و (3/90 ± 60/93) سانتی متر و سن (0/38 ± 3/8) و (0/51 ± 3/50) سال بودند. میانگین هم آوری مطلق و هم آوری نسبی ماهیان مولد گیلان و مازندران به ترتیب 57921/67±239900 و 23008/76±139900 و هم آوری نسبی 5583/58±57629/31 و 2129/45±43568/639 بود. میانگین ارتفاع بدن و قطر تخمکهای ماهیان مولد گیلان و مازندران به ترتیب 2/06±17/50 و 1/42±14/60 و قطر تخمک ها 0/11682±0/759 و 0/4291±0/640 میلی متر محاسبه گردید. میانگین هم آوری مطلق با افزایش طول چنگالی، وزن بدن و سن ماهی افزایش یافت. ضریب همبستگی بین هم آوری مطلق و وزن بدن ماهی برای نمونه های گیلان و مازندران به ترتیب 0/94 و 0/87، بین هم آوری و طول کل 0/72 و 0/81 و بین هم آوری مطلق و سن ماهیان 0/68 و 0/71 به دست آمد. هم آوری مطلق، بین مولدین گیلان و مازندران دارای تفاوت آماری معنی دار بود.
http://www.aejournal.ir/article_133876_6f0fc00fe89a70337728cc14083623de.pdf
2021-04-21
313
318
10.22034/aej.2021.133876
تکثیر
کپور معمولی پرورشی
هم آوری
گیلان
مازندران
بیژن
اندرز
b_andarz2003@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
ابوالقاسم
کمالی
abolghasemkamali@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
مهران
آوخ کیسمی
dr.keysami@gmail.com
3
موسسه آموزش عالی علمی کاربردی علوم و صنایع شیلاتی میرزا کوچک خان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
هومن
رجبی اسلامی
humanrajabi@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
بیسواس، س.پ.، 1993. روش های مطالعه زیست شناسی ماهیان. ترجمه عبدالملکی، ش.و ولی پور، ع.، 1379. مرکز تحقیقات شیلات استان گیلان. 199 صفحه.
1
پرافکنده حقیقی، ف.، 1379. روش های تعیین سن آبزیان. موسسه تحقیقات شیلات ایران. صفحات 13 تا 15.
2
سالنامه آماری شیلات ایران. 1391. معاونت برنامه ریزی و توسعه مدیریت. دفتر برنامه و بودجه سازمان شیلات ایران.60 صفحه.
3
علیجانپور، ن. و فلاح شمسی، ز.، 1387. اثر سن، قطر تخم، رنگ تخم، طول ماهی، وزن ماهی، زمان و دمای آب بر روی هم آوری و درصد لقاح ماهی سفید (Rutilus frisii kutum) ماده مهاجر به رودخانه شیرود. پایان نامه کارشناسی شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان. 187 صفحه.
4
عقیلی، ک.؛ یگانه، س. و امینی، ک.، 1397. اثرات سن و وزن مولدین کپور معمولی (Cyprinus carpio Linnaeus)، صید شده از دریا و مولدین دریایی. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 10، شماره 2، صفحات 171تا 173.
5
رئوفی، پ.؛ جعفریان، ح.؛ پاتیمار، ر.؛ قربانی، ر. و هرسیج، م.، 1397. اثرات پرورشماهی کپورمعمولی در قفس بر ساختار جمعیت زئوپلانکتونی استان گلستان. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 10، شماره 4، صفحات 291 تا 300.
6
عزیزی، ش.؛ کوچنین، پ.؛ پیغان، ر.؛ مروتی، ح.؛ خوانساری، ع. و بسطامی، ک.د.، 1388. اثر تغیرات شوری روی بافت کپور معمولی (Cyprinus carpio Linnaeus) استان خوزستان. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 1، شماره3، صفحات 47 تا 56.
7
Aliniya, M.; Khara, H.; Baradaran Noveiri, S.H. and Dadras, H., 2013. Influence of common carp (Cyprinus carpio) Broodstock onreproductive traits and fertilization. TurkishJournal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 13, pp: 19-21.
8
Bagenal, T.B., 1969. The relationship betweenfood supply and fecundity in brown trout Salmo trutta L. Journalof Fish Biology. Vol. 1, pp: 167-182.
9
Bagenal, T.B., 1978. Aspects of fish fecundity. In: Ecology of Freshwater Fish Production. Gerking, S.D., (Ed.). Blackwell ScientificPublications, Oxford. pp: 75-101.
10
Baum, E.T. and Meister, A.L., 1971. Fecundity of Atlantic salmon (Salmo salar) from two Mainerivers. Journal of the Fisheries Research Boardof Canada. Vol. 28, pp: 764-767.
11
Baxter, I.G., 1959. Fecundities of winter -spring and summer - autumn herring spawners. Journal du Conseil/ Permanent Internationalpour I'Exploration de la Mer. Vol. 25, pp: 73-80.
12
Berg, L.S., 1949. Freshwater fishes of Iran and adjacent countries. Trudy Zoologicheskogo Instituta Akademii Neuk SSSR. Vol. 8, pp: 783-858.
13
Bhuiyan, A.S.; Islam, K. and Zaman, T., 2006. Fecundity and ovarian characteristics ofPuntius gonionotus. Journal of BiologicalSciences. Vol. 14, pp: 99-102.
14
Billard, R.; Cosson, J.; Perchec, G. and Linbart, O., 1995. Biology of sperm and artificialre production in carp. Aquaculture. Vol. 124, pp: 95-112.
15
Billard, Y., 1995. Decline of yellow perch in Southwestern Lake Michigan, 1987- 1997. North Am. J. Fish. Manage. Vol. 24, pp: 952-966.
16
Bozkur, Y. and Ogretmen, F., 2012. Spermquality, egg size, fecundity and theirrelationships whit fertilization rate of grasscarp (Cetenopharyngodon idella). IranianJournal of Fisheries Sciences. Vol. 4, pp: 755-764.
17
Bromage, N.R.; Jones, J.; Randall, C.; Thrush, M.; Davies, B.; Springate, J.; Duston, M. and Barker, J., 1992. Broodstock management, fecundity egg quality and the timing of eggproduction in the rain bow trout (Oncothynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 100, pp:141-166.
18
Craig, J.F., 2000. Percid Fishes: Systematics, Ecology and Exploitation. Blackwell Science. Malden, MA. 352 p.
19
Eskinaro, J.; Dempson, J.B.; Julkunen, M. and Niemela, E., 1997. Importance of ontogenetichabitat shifts to juvenile output and life historyof Atlantic salmon in a large subarctic river. An approach based on analysis of scalecharacteristics. Journal of Fish Biology. Vol. 51, pp: 1174-1185.
20
FAO. 2019. Common carp - Cyprinus carpio (Linnaeus, 1758) [Cyprinidae] FAO official common names: Fr - Carpe commune; Es Carp. Committee on World Food Security (CFS). 46th Session Rome, Italy, 14-18 October 2019.
21
Gurbuz, O.A., 2011. Age and reproductionfeatures of Tench (Tinca tinca) fromhirfanli Dam Lake, Kishmir, Turkey. Journalof Fisheries Sciences. Vol. 2, pp: 153-163.
22
Hanchet, S., 1990. The effects of koi carp on New Zealand aquatic ecosystems. New Zealand FreshwaterFisheries Report No. 117. Freshwater Fisheries Center, MAF Fisheries. pp: 1-41.
23
Hard,K., 1995. Fish water. pp: 1-35.
24
Hosseinzadeh, H., 2002. Reproductive biology of fishes emphasized on Iranian fishes. Jehade Daneshgahee Publication. Tehran. Vol. 6, 272 p.
25
Mousavi Gelsefid, S.A., 2001. The study of common carp (Cyprinus carpio) population in Anzali Wetland. M. Sc. Thesis. Faculty of natural resources. Islamic Azad University, Lahidjan Branch, Iran. 108 p.
26
Potts, G.W. and Wootton, R.J., 1989. Fish reproduction. Strategies and Tactics.Academic press limited. 3rd Ed. printed in Great Britain. 410 P. Applied Ichthyology. Vol. 19, pp: 346-351.
27
Rasool, N., 2013. Study on the fecundity ofSalmo trutta fario (Brown trout) in Kashmir.Journal of Biological and Life Sciences. Vol. 1, pp: 181-193.
28
Rheman, S.; Islam, M.L.; Shah, M.M.R.; Mondal, S. and Alam, M.J., 2002. Observation onthe Fecundity and gonadosomatic index (GSI)of grey mullet Liza parsia. Online Journal of Biological Sciences. Vol. 2, pp: 690-693.
29
Saifullah, A.S.M.; SayedurRahman, M. and SharifAhmed Khan, Y., 2004. Fecundity of Hilsailisha (Hamilton, 1822) from the Bay ofBengal. Pakistan Journal of BiologicalSciences. Vol. 7, pp: 1394-1398.
30
Sarker, P.K.; Pal, H.K. and Rahman, M.M., 2002. Observation on the fecundity and gonadosomaticindex of Mystus gulio in brackishwaters of Bangladesh. Journal of Biological Sciences. Vol. 2, pp: 235-237.
31
Sasi, H., 2008. The length and relation of somereproduction characteristics of curssian carp, Carassius gibelio (Bloch, 1782) in the SouthAegean region (Aydin, Turkey). Journal ofFisheries and Aquatic Sciences. Vol. 8, pp: 87-92.
32
Shafi, S.; Yousuf, A.R. and Parveen, M., 2013. Length weight relationship and breedingbiology of Puntius conchonius (Hamillton,1822) from Dal Lake, Kashmir. International Journal of Innovative Research and Development. Vol. 2, pp: 299 -312.
33
Springate, J.R.C., 1990. Eggqualityandfecundity in rainbow trout: determining factorsand mechanisms of control. DissertationAbstract International Part B: Science and Engineering. 256 p.
34
Turkmenm, M.; Erdogan, O.; Yildirim, A. and Akyurt, I., 2002. Reproduction tactics, age andgrowth of Capoeta capoeta umbla from the Askale region of the KarasuRiver, Turkey. Fisheries Research. Vol. 54, pp: 317-328.
35
Unlu, E. and Balci, K., 1993. Observation on thereproduction of Leuciscus cephalus orientalis (Cyprinidae) in Savur stream, Turkey. Vol. 17, pp: 271- 250.
36
Yaron, Z., 1995. Endocrine control ofgametogenesis and spawninginduction inthecarp. Aquaculture. Vol. 129, pp: 49-73.
37
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی برخی شاخص های ایمنی ذاتی سرم و موکوس پوست ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) در مواجهه با تنش شوری
تحقیق حاضر جهت ارزیابی برخی شاخص های ایمنی ذاتی سرم و موکوس پوست ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) در مواجهه با تنش شوری صورت گرفت. بدین منظور 180 قطعه بچه ماهی کپور با میانگین وزن 0/62±50 گرم تهیه و به سالن آبزی پروری شهید فضلی برآبادی دانشکده شیلات و محیط زیست دانشگاه گرگان انتقال یافت. پس از دو هفته آداپتاسیون، آزمایش در قالب 3 تیمار شامل تیمار آب شیرین (شوری ppt 0)، تیمار حاوی مخلوط 50 درصد آب شور و 50 درصد آب شیرین تیمار آب شور دریا ی خزر (شوری ppt 7) و (شوری ppt 14) انجام شد. جهت بررسی شاخص های ایمنی ذاتی (پروتئین محلول، فسفاتاز قلیایی و لیزوزیم) در پاسخ به تنش شوری، نمونه برداری از سرم و موکوس پوست در سه مرحله مجزا شامل روز سوم، روز ششم و روز نهم بعد از در معرض قرار گیری با شوری های مختلف انجام گرفت. نتایج نشان داد که تغییرات شوری تاثیر معنی داری بر میزان پروتئین کل، فسفاتاز قلیایی، لیزوزیم سرم و موکوس ماهی داشت (0/05<p ) ولی تغییرات شوری تاثیر معنی داری بر غلظت پروتئین محلول موکوس پوست ماهی نداشت (P>0/05). نتیجه گیری کلی تحقیق حاضر نشان داد که میزان لیزوزیم موکوس با افزایش شوری در همه دوره ها کاهش یافت. میزان لیزوزیم سرم در روزهای ابتدایی مواجهه با تنش شوری، افزایش یافت ولی با گذشت زمان میزان این شاخص نسبت به ابتدای دوره کاهش یافت. میزان فسفاتاز قلیایی موکوس در روزهای ابتدایی در آب لب شور و در روزهای انتهایی در آب شور افزایش یافت ولی میزان آلکالین فسفاتاز سرم در روزهای ابتدایی مواجهه با تنش شوری، کاهش و با گذشت زمان افزایش یافت. میزان پروتئین محلول موکوس طی دوره های مختلف شوری اختلاف معنی داری وجود نداشت ولی پروتئین کل سرم خون در روزهای ابتدایی مواجهه با تنش شوری، افزایش یافت ولی با گذشت زمان میزان این شاخص نسبت به ابتدای دوره کاهش یافت.
http://www.aejournal.ir/article_133912_6fdb2c55934ae53af726780d5fcf8ddb.pdf
2021-04-21
319
324
10.22034/aej.2021.133912
تنش شوری
آبزی
شاخص های موکوس
شاخص های سرم
سپیده
غنی
sepidgh333h@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
عبدالمجید
حاجی مرادلو
ahajimoradloo@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
حامد
پاک نژاد
hkolangi@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
مرضیه
ابوالفتحی
m.aboolfathi@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
عبدلی، ا. و نادری، م.، 1387. تنوع زیستی ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر. تهران. انتشارات علمی آبزیان. 244 صفحه.
1
علیشاهی، م.؛ سلطانی، م.؛ مصباح، م. و اسمعیلی راد، ا.، 1390. تأثیر تجویز خوراکی عصاره خار مریم بر پاسخ های ایمنی ماهی کپور معمولی. مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 66 ، شماره 3، صفحات 255 تا 263.
2
نعمت الهی، م.ع.، 1389. پاسخ به استرس اسارت در تور در ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio). مجله شیلات، نشریه منابع طبیعی ایران. دوره 63 ، شماره 1، صفحات 39 تا 47.
3
Adel, M.; Safari, R.; Nematolahi, A.; Yeganeh, S. and Ahmadvand, S., 2014. Effect of different levels of Grobiotic A probiotic on antibacterial activity and some immune parametrose of Huso huso. Exploitation and aquaculture Jurnal. Vol. 3, No. 33, pp: 99-110. (in persian).
4
Almeida, J.S.; Meletti, P.C. and Martinez, C.B., 2005. Acute effects of biochemical parameters of the neotropical fish Prochilodus lineatus. Comp Biochem Physiol. Vol. 140, pp: 356-363.
5
Ángeles Esteban, M., 2012. An overview of the immunological defenses in fish skin. ISRN Immunology.
6
Austin, B. and McIntosh, D., 1988. Natural antibacterial compounds on the surface of rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson. J of Fish Diseases. Vol. 11, No. 3, pp: 275-277.
7
Caipang, C.M.E.; Brinchmann, M.F. and Kiron, V., 2009. Short-term crowding stress in Atlantic cod, Gadus morhua L. modulates the humoral immune response. Aquaculture. Vol. 295, pp: 110-115.
8
Dominguez, M.; Takemura, A.; Tsuchiya, M. and Nakamura, S., 2004. Impact of different environmental factors on the circulating immunoglobulin levels in the Nile tilapia. Aquaculture. Vol. 241, pp: 491-500.
9
Kumar, S.; Sahu, N.P.; Pal, A.K.; Choudhury, D.; Yengkokpam, S. and Mukherjee, S.C., 2005. Effect of dietary carbohydrate on haematology, respiratory burst activity and histological changes in (Labeo rohita) juveniles. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 19, pp: 331-344.
10
Lowry, O.H.; Rosebrough, N.J.; Farr, A.L. and Randall, R.J., 1951. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J of biological chemis. Vol. 193, No. 1, pp: 265-275.
11
Martinez-Alvarez, R.M.; Hidalgo, M.C.; Domezain, A.; Morales, A.E.; García-Gallego, M. and Sanz, A., 2002. Physiological changes of sturgeon Acipenser naccarii caused by increasing environmental salinity. Journal of experimental biology. Vol. 205, No. 23, pp: 3699-3706.
12
Nigam, A.K.; Kumari, U.; Mittal, S. and Mittal, A.K., 2012. Comparative analysis of innate immune parameters of the skin mucous secretions from certain freshwater teleosts, inhabiting different ecological niches. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 38, pp: 1245-1256.
13
Palaksha, K.J.; Shin, G.W.; Kim, Y.R. and Jung, T.S., 2008. Evaluation of non-specific immune components from the skin mucus of olive flounder. Fish & shellfish immunology. Vol. 24, No. 4, pp: 479-488.
14
Palikova, M.; Kopp, R.; Mares, J.; Navratil, S.; Kubicek, Z.; Chmelar, L.; Bandouchova, H. and Pikula, J., 2010. Selected haematological and biochemical indices of Nile tilapia reared in the environment with cyanobacterial water bloom. Acta Veterinaria. Brno. Vol. 79, pp: 63-71.
15
Peyghan, S. and Salamat, N., 2012. Study of changes in the structure skine texture of Carassius auratus in Ahvaz city. Histobiology Veterinary Journal. Vol. 1, No. 1, pp: 1-4.
16
Riche, M., 2007. Analysis of refractometry for determining total plasma protein in hybrid striped bass at various salinities. Aquaculture. Vol. 264, pp: 279-284.
17
Roosta, Z.; Hajimoradloo, A.; Ghorbani, R. and Hoseinifar, S.H., 2014. The effects of dietary vitamin C on mucosal immune responses and growth performance in Caspian roach (Rutilus rutilus caspicus) fry. Fish physiology and biochemistry. Vol. 40, No. 5, pp: 1601-1607.
18
Ross, N.W.; Firth, K.J.; Wang, A.; Burka, J.F. and Johnson, S.C., 2000. Changes in hydrolytic enzyme activities of naive Atlantic salmon Salmo salar skin mucus due to infection with the salmon louse Lepeophtheirus salmonis and cortisol implantation. Diseases of aquatic organisms. Vol. 41, No. 1, pp: 43-51.
19
Subramanian, S.; MacKinnon, S.L. and Ross, N.W., 2007. A comparative study on innate immune parameters in the epidermal mucus of various fish species. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Biochemistry and Molecular Biology. Vol. 148, No. 3, pp: 256-263.
20
Sadhu, N.; Sharma, S.R.K.; Joseph, S.; Dube, P. and Philipose, K.K., 2014. Chronic stress due to high stocking density in open sea cage farming induces variation in biochemical and immunological functions in Asian seabass. Fish Physiol Biochem. Vol. 40, pp: 1105-1113.
21
Sowunmi, A.A., 2003. Haematology of the African catfish (Clarias gariepinus) from Eleiyele Reservoir, Ibadan South West, Nigeria. The Zoologist. Vol. 2, No. 1, pp: 85-91.
22
Taylor, J.F.; Needham, M.P.; North, B.P.; Morgan, A.; Thompson, K. and Migaud, H., 2007. The influence of ploidy on saltwater adaptation, acute stress response and immune function following seawater transfer in nonsmolting rainbow trout. General and Comparative Endocrinology. Vol. 152, pp: 314-325.
23
Varsamos, S.; Nebel, C. and Charmantier, G., 2005. Ontogeny of osmoregulation in postembryonic fish: a review. Comparative Biochemistry and Physiology, Part A. Vol. 141, pp: 401-429.
24
ORIGINAL_ARTICLE
ﺗﺄثیر ﺳﻄﻮح مختلف ملاس چغندر جیره غذایی بر شاخص های رشد و بقا، فلورباکتریایی روده و طول پرز روده ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio)
در ﻣﻄﺎﻟﻌﻪ ﺣﺎﺿﺮ اﺛﺮات ﺳﻄﻮح ﻣﺨﺘﻠﻒ ملاس چغندر ﺑﺮ ﺑﺮﺧﯽ از شاخص های رشد و بقا، فلورباکتریایی روده و طول پرز روده در ماهی کپور معمولی مورد بررسی قرار گرفت. در این آزمایش از 360 قطعه ماهی کپور معمولی با میانگین وزنی 2/5±28 گرم استفاده شد. بچه ماهی ها در 12 مخزن به تعداد 30 قطعه در هر مخزن به طور تصادفی توزیع شد. پس از یک هفته آداپتاسیون، در یک دوره به مدت 8 هفته غذادهی انجام گرفت . آزمایش در قالب 4 تیمار و هر تیمار با 3 تکرار شامل: جیره فاقد ملاس (تیمار 1)، جیره حاوی 0/5 درصد ملاس (تیمار 2)، جیره حاوی 1 درصد ملاس (تیمار3) و جیره حاوی 2 درصد ملاس (تیمار 4) انجام شد و ماهی ها روزانه به میزان 3 درصد وزن بدن و دو بار در روز با جیره های آزمایشی تغذیه شدند. غذای گروه شاهد، غذای تجاری کپور معمولی شرکت فرادانه بدون ملاس بود . بررسی شاخص های رشد و تغذیه (افزایش وزن بدن، درصد افزایش وزن بدن، نرخ رشد ویژه، فاکتور وضعیت، ضریب تبدیل غذایی)، تعداد کل باکتری های روده و هم چنین طول پرز روده در پایان دوره آزمایش انجام شد. تجزیه و تحلیل داده ها در پایان دوره نشان داد شاخص های رشد و تغذیه (افزایش وزن بدن، نرخ رشد ویژه، فاکتور وضعیت، ضریب تبدیل غذایی) در بین تیمارهای مختلف اختلاف معنی داری باهم داشت (0/05>p ). بررسی تعداد کل باکتری های هوازی روده نشان داد در بین تیمارهای مختلف اختلاف معنی داری در تعداد کل باکتریهای هوازی روده وجود داشت (0/05>p ). هم چنین بررسی طول پرزهای روده در تیمارهای مختلف حاکی از آن بود که اندازه طول پرزهای روده در بین تیمارهای مختلف اختلاف معنی داری با یکدیگر داشتند (0/05>p ). به طور کلی جیره غذایی حاوی ملاس بر شاخص های رشد و بقا، فلور باکتریایی روده و طول پرز روده ماهی کپور معمولی تاثیرگذار بود و باعث تغییر شاخص های رشد و افزایش باکتری های هوازی روده و افزایش طول پرز روده در تیمار 2% ملاس شد.
http://www.aejournal.ir/article_133920_b0579c1c5c50f0f5eb08debdaf6fe21c.pdf
2021-04-21
325
330
10.22034/aej.2021.133920
ملاس چغندر
شاخص های رشد
باکتریایی هوازی روده
طول پرز روده
مصطفی
بیگی
beygimostafa392@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
عبدالمجید
حاجی مرادلو
ahajimoradloo@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سید حسین
حسینی فر
hossein.hoseinifar@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
علی
جافرنوده
a.jafar55@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
Alderman, D.J. and Hastings, T.S., 1998. Antibiotic use in aquaculture: development of antibiotic resistance–potential for consumer health risks. International Journal of Food science and Technology. Vol. 33, No. 2, pp: 139-155.
1
Broderick, G.A. and Radloff, W.J., 2004. Effect of molasses supplementation on the production of lactating dairy cows fed diets based on alfalfa and corn silage. Journal of Dairy Sciences. Vol. 87, pp: 2997-3009.
2
Balfry, S.K. and Iwama, G.K., 2004. Observation on the inherent variability of measuring lysozyme activity in coho salmon (Oncorhynchus kisutch).Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 138, pp: 207-211.
3
Diane, W.C.; Ignacio, F.F.; Erkki, V.; Norman, C.S. and Thomas, J.C., 2003. Betaine improves growth, but does not induce whole body or hepatic palmitate oxidation in swine (Susscrofa domestica). Comparative Biochemistry and Physiology A. Vol. 137, pp: 131-140.
4
Fletcher, T.C., 1978. Defence mechanisms in fish. In: Malins, D.C. and Sargent, J.R., (Eds.), Biochemical and Biophysical Perspectives in Marine Biology, vol. 2. Academic Press. London. pp: 189-222.
5
Fisheries Global Information System (FAO-FIGIS) Web Site. Fisheries Global Information System (FIGIS). FI Institutional Websites. In: FAO Fisheries and Aquaculture Department [online]. Rome. (available at: www.fao.org/ fishery/figis/en).
6
Gültepe, N.; Bilen, S.; Yılmaz, S.; Güroy, D. and Aydın, S., 2014. Effects of herbs and spice on health status of tilapia (Oreochromis mossambicus) challenged with Streptococcus iniae. Acta Veterinaria Brno. Vol. 83, No. 2, pp: 125-131.
7
Hoseinifar, S.H.; Roosta, Z.; Hajimoradloo, A. and Vakili, F., 2015. The effects of Lactobacillus acidophilus as feed supplement on skin mucosal immune parameters, intestinal microbiota, stress resistance and growth performance of black swordtail (Xiphophorus helleri). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 42, pp: 533-538.
8
Huhtanen, P., 1988. The effects of barley, unmolassed sugar-beet pulp and molasses supplements on organic matter, nitrogen and fiber digestion in the rumen of cattle given a silage diet. Animal Feed Sciences Technol. Vol. 20, pp:
9
Ichikawa, H.; Kuroiwa, T.; Inagaki, A.; Shineha, R.; Nishihira, T.; Satomi, S. and Sakata, T., 1999. Probiotic bacteria stimulate gut epithelial cell proliferation in rat. Digestive Diseases and Sciences. Vol. 44, pp: 2119-2123.
10
Jung, T.S.C.; del Castillo, S. and Javaregowda, P.K., 2012. Seasonal variation and comparative analysis of non specific humoral immune substances in the skin mucus of olive flounder (Paralichthys olivaceus), Developmental and Comparative Immunology. Vol. 38, No. 2, pp: 295-301.
11
Lee, J.Y. and Gao, Y., 2012. Review of the application of garlic (Allium sativum) in aquaculture. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 43, No. 4, pp: 447-458.
12
MacLennan, A.H.; Wilson, D.H. and Taylor, A.W., 2002. The escalating cost and prevalence of alternative medicine. Preventive Medicine. Vol. 35, No. 2, pp: 166-173.
13
Mahious, A.S. and Ollevier, F., 2005. Probiotic and Prebiotics in Aquaculture: Review. pp: 17-26.1.st Regional Workshop on Techniques for Enrichment of Live Food for Use in Larviculture (Uremia, Iran).
14
Mekbungwan, A. and Yamauchi, K., 2004. Growth performance and histological intestinal alterations in piglets fed diet raw and heated pigeon pea seed meal. Histology and Histopathology. Vol. 19, No. 2, pp: 381-389.
15
Pirarat, N.; Pinpimai, K.; Rodkhum, C.; Chansue, N.; Ooi, E.L.; Katagiri, T. and Maita, M., 2015. Viability and morphological evaluation of alginate-encapsulated Lactobacillus rhamnosus GG under simulated tilapia gastrointestinal conditions and its effect on growth performance, intestinal morphology and protection against Streptococcus agalactiae. Animal Feed Science and Technology. Vol. 201, pp: 22-612.
16
Pirarat, N.; Pinpimai, K.; Endo, M.; Katagiri, T.; Ponpornpisit, A.; Chansue, N. and Maita, M., 2011. Modulation of intestinal morphology and immunity in nile tilapia (Oreochromis niloticus) by Lactobacillus rhamnosus GG. Research in Veterinary Science. Vol. 91, pp: 92-97.
17
Pelicano, E.R.L.; Souza, P.A.; Souza, H.B.A.; Figueiredo, D.F.; Boiago, M.M.; Carvalho, S.R. and Bordon. V.F., 2005. Intestinal mucosa development in broiler chickens fed natural growth promoters. RevistaBrasileira de Ciencia Accola. Vol. 7, pp: 221-229.
18
Reilly, A. and Keferstein, F., 1997. Food safety hazards and the application of the principles of the hazard analysis and critical control point (HACCP) for their control in Aquaculture production. Aquaculture Research. Vol. 28, pp: 735-752.
19
Schley, P.D. and Field, C.J., 2002. The immune-enhancing effects of dietary fibers and prebiotics. British Journal Nutrition. Vol. 87, pp: 221-230.
20
Sivaram, V.; Babu, M.M.; Immanuel, G.; Murugadass, S.; Citarasu, T. and Marian, M.P., 2004. Growth and immune response of juvenile greasy groupers (Epinephelus tauvina) fed with herbal antibacterial active principle supplemented diets against Vibrio harveyi infections. Aquaculture. Vol. 237, pp: 9-20.
21
Soder, K.J.; Hoffman, K. and Brito, A.F., 2010. Effect of molasses, corn meal, or a combination of molasses plus corn meal on ruminal fermentation of orchardgrass pasture during continuous culture fermentation. Professional Animal Scientist. Vol. 26, pp: 167-174.
22
Ysasr, S. and Forbes, J.M., 1999. Performance and gastrointestinal response of broiler chicks fed on cereal gain based foods soaked in water. British Poultry ScieNCE. Vol. 40, pp: 65-76.
23
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر عصاره آبی گیاه سیر(Allium sativum) بر درمان بیماری ایکتیوفیتریوزیس ماهی گلدفیش (Carassius auratus)
بیماری ایکتیوفیتریوزیس از مهم ترین بیماریهای ماهیان آب های شیرین می باشد. در این تحقیق اثر درمانی عصاره آبی سیر در درمان ماهی گلدفیش مورد بررسی قرار گرفت. تعداد 200 قطعه ماهی گلد فیش به ظاهر سالم با وزن متوسط 1± 15 گرم به طور تصادفی به پنج تیمار با سه تکرار تقسیم شدند در ادامه عصاره به دست آمده از گیاه سیر به دو روش مستقیم و غیر مستقیم در دو غلظت 177 و 570 میلی گرم در لیتر به شکل حمام بلند مدت بر روی ماهیان آلوده به انگل ایک آزمایش شد. طی مدت آزمایش که تا پاک سازی کامل سطح بدن ماهیان ادامه یافت هر 24 ساعت یک بار تعداد انگل روی بدن ماهیان با تهیه لام مرطوب شمارش شد. نتایج به دست آمده حاکی از اثر گذاری مناسب عصاره بر روند کاهش تعداد انگل و درمان بیماری در گروه های مختلف بود و تعداد انگل رویت شده بر روی بدن ماهیان گروه شاهد به شکل معنی داری از انگل های مشاهده شده بر روی بدن ماهیان گروه های آزمایش بیش تر بود (p <0/05). هم چنین عصاره استخراج شده به شکل مستقیم در هر دو غلظت از عصاره مستخرج به شکل غیرمستقیم موثرتر بود (p <0/05). این نتایج با کاهش روند تلفات و صفر شدن آن در تیمارهای مختلف تایید شد که با توجه به آن می توان عصاره سیر را در درمان این بیماری توصیه نمود.
http://www.aejournal.ir/article_133941_4cee803516fe7bac42792a0c4afe2fa3.pdf
2021-04-21
331
336
10.22034/aej.2021.133941
گلد فیش
ایکتیوفتیریوس مولتی فیلیس
عصاره سیر
امید
کریمی
1
گروه بهداشت و بیماری های آبزیان، دانشکده دامپزشکی، واحد سنندج، دانشگاه آزاد اسلامی، سنندج، ایران
AUTHOR
علی
پارسا
apk1357@gmail.com
2
گروه بهداشت و بیماری های آبزیان، دانشکده دامپزشکی، واحد سنندج، دانشگاه آزاد اسلامی، سنندج، ایران
LEAD_AUTHOR
اصحابی، س.ز.، 1391. تأثیرات نگه داری از ماهی های زینتی در آکواریوم به عنوان حیوانات خانگی. اولین همایش پژوهش های شیلاتی با محوریت ماهیان زینتی. دانشگاه آزاد اسلامی واحد بابل. 8 تا 10 اسفند.
1
بهرام زاده، ع.؛ صحرایی، ر. و پوریا، م.، 1391. ماهیان زینتی پتانسیلی بالقوه در توسعه شیلاتی استان کرمانشاه. همایش منطقه ای مطالعات کاربردی در شیلات و محیط زیست. دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرمانشاه. 23 اردیبهشت.
2
پیغان، ر.؛ رضایی، ا. و زادپرور، ن.، 1393. مطالعه تأثیر عصاره سیر خام بر میزان رشد و هیستوپاتولوژی کبد، کلیه و حباب روده ای در ماهی کپور معمولی. نشریه پژوهش و سازندگی. دوره 27، شماره 4، صفحات 68 تا 76.
3
جلالی جعفری، ب.، 1377. انگل ها و بیماری های انگلی ماهیان آب شیرین ایران. انتشارات معاونت تکثیر و پرورش آبزیان، اداره کل آموزش و ترویج. صفحات 155 تا 168.
4
حسین زاده،س. و بحرکاظمی، م.، 1398. تاثیر تجویز خوراکی لاکتوفرین، بتاگلوکان و سیاه دانه بر شاخص های رشد و پارامترهای خونی و ایمنی در ماهی کپور معمولی. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 11، شماره 2، صفحات 187 تا 196.
5
رمضانی، ح.؛ بینایی، م. فضلی، ح.، 1398. تاثیر سطوح مختلف گیاهان دارویی در جیره بر برخی شاخص های خونی، بیوشیمیایی و ایمنی قزل آلای رنگین کمان پرورشی در مرحله پرواری. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 11، شماره 3، صفحات 141 تا 146.
6
عسگری، ر.، ۱۳۸۴. ماهی شناسی سیستماتیک. انتشارات سروا. 260 صفحه.
7
میرزایی، ح.، 1385. روش تحقیق در علوم دامی و دامپزشکی. انتشارات دانشگاه آزاد اسلامی واحد تبریز. 256 صفحه.
8
Buchmanna, K., Jensena, P. B., and Krusea, K. D., 2003. Effects of Sodium Percarbonate and Garlic Extract on Ichthyophthirius multifiliis Theronts and Tomocysts: In Vitro Experiments; North American Journal of Aquaculture. Vol. 65, No. 1, pp: 21-24.
9
Colorni, A., Avtalion, R., Knibb, W. Berge, E., Colorni, B. and Timan, B., 1998. Histopathology of sea bass Dicentrarchus labrax experimentally infected with Mycobacterium marinum and treated with streptomycin and garlic (Allium sativum) extract. Aquac. Vol. 190, pp: 1-17.
10
Corzo-Martinez, M.; Corzo, N. and Villamiel, M., 2007. Biological properties of onions and garlic, Trends in. Food Sci. and Techno. Vol. 18, pp: 609-625.
11
Giannenas, I.; Triantafillou, E.; Stavrakakis, S.; Margaroni, M.; Mavridis, S.; Steiner, T. and Karagouni, E., 2012. Assessment of dietary supplementation with carvacrol or thymol containing feed additives on performance, intestinal microbiota and antioxidant status of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 353, pp: 26-32.
12
Konjufca, V.H.; Pesti, G.M. and Bakalli, R.I., 1997. Modulation of cholesterol levels in broiler meat by dietary garlic and copper. Poul. Sci. Vol. 76, pp: 1264-1271.
13
Pena, N.; Auro, A. and Sumano, H., 1988. A comparative trial of garlic, its extract and ammonium- potassium tartrate as anthelmintics in carp. Journal-of-Ethnopharmacology. Vol. 24, No. 2-3, pp: 199-203.
14
Peyghan, R.; Powel, M.D. and Zadkarami, M.R., 2008. In vitro effect of Garlic extract and Metronidazole against Neoparamoeba pemaquidensis and isolated amoeba from atlantic salmon. Pakistan jornal of Biological sciences. Vol. 11, No. 1, pp: 41-47.
15
Ramos, A., 1991. Treatment of saprolegniasis in rain trout with garlic. Veterinaria Mexico. Vol. 22, No. 1, pp: 98.
16
Sahandi, J.; Gholipour-Kanani; H. and Taheri, A., 2012. Influence of Garlic (Allium sativum) and Mother worth (Matricaria chamomilla) Extract on Ichthyophtirius multifilus Parasite Treatment in Sail Fin Molly (Poecilia latipinna) Ornamental Fish. 2nd International Conference on Asia Agriculture and Animal (ICAAA 2012).
17
Sinai, T. and Zilberg, D., 2014. Efficacy of garlic based treatments against monogenean parasites infecting the guppy, Vet Parasitol. Jun 16. Vol. 203, No. 1-2, pp: 51-58. doi: 10.1016/j.vetpar.2014.02.002.
18
Sivam, G.P., 2001. Recent advances on the nutrition effects associated with the use of garlic as supplement. Am. Soc. Nutr. Sci. Vol. 31, pp: 955-962.
19
Slusarenko, A.J.; Patel, A. and Portz. D., 2008. Control of plant diseases by natural products: Allicin from garlic as a case study. European J. Plant Pathol. Vol. 12, No. 3, pp: 313-322.
20
Soko, C.K. and Barker, D.E., 2004. Efficacy of crushed garlic and lemon juice as bio-product treatments for Ichthyophthirius multifiliis infections among juvenile Nile tilapia, Oreochromis niloticus. Aquaculture Associaton of Canada Special Publication. Vol. 9, pp: 108-110.
21
Wang, H. and Nq, T., 2010. The rolor of lysozymes. Biochemistry Reserch Community. Vol. 336, No. 1, pp: 100-104.
22
William, Q., 2008. Least toxic controls of plant diseases. Brooklyn Botanic garden. Natural Disease Control. Vol. 11, 225 p.
23
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات جایگزینی پروتئین آبکافت شده ماهی کپورنقره ای (Hypophthalmichthys molitrix) با تخم مرغ بر پایداری و خواص حسی سس مایونز
سس مایونز یک امولسیون روغن در آب بوده که همواره به دلیل بافت و طعم مطلوب مورد علاقه و تحسین بسیاری از مصرف کنندگان قرار گرفته است. در این پژوهش اثر جایگزینی تخم مرغ در سس مایونز با پودر پروتئین آبکافت شده ماهی کپور نقرهای (Hypophthalmicthys molitrix) بر ترکیب شیمیایی، پایداری مکانیکی-حرارتی و خصوصیات حسی مایونز تولید شده در سال 1394 ارزیابی شد. برای این منظور، پروتئین آبکافت شده ماهی کپور نقره ای با استفاده از آنزیم پروتامکس (1/5 درصد) آماده و در سطوح مختلف صفر، 25، 50، 75 و 100 درصد جایگزین تخم مرغ شد. نتایج حاصل از ترکیب شیمیایی تیمارها نشان داد که با افزایش میزان جایگزینی پروتئین آبکافت شده ماهی کپور نقره ای به جای تخم مرغ میزان پروتئین خام و خاکستر در سس تهیه شده نسبت به تیمار شاهد به طور معنی داری افزایش یافت (0/05>p و میزان چربی و رطوبت در تیمارها کاهش یافت (0/05>p ). هم چنین نتایج نشان داد که نمونه های سس مایونز تولیدی با پروتئین آبکافتی ماهی در درجه حرارت 20- و 50 درجه سانتی گراد دارای پایداری امولسیونی بیش تری نسبت به تیمار شاهد بودند (0/05>p ). نتایج حاصل از ارزیابی حسی نشان داد که فاکتور طعم در تیمارهای مختلف به غیر از تیمار 50 درصد جایگزینی پروتئین تفاوت معنی داری نسبت به شاهد نداشتند (0/05<p ) و سایر شاخص های حسی (بو، بافت، رنگ و مقبولیت کلی) نیز نسبت به تیمار شاهد تفاوت معنی داری نداشت (0/05<p ). به طور کلی می توان گفت پروتئین آبکافتی قابلیت جایگزینی با تخم مرغ را در سس مایونز داشته و خصوصیات مشابه و گاهی بهتر از سس معمولی ایجاد می کند.
http://www.aejournal.ir/article_133967_803590165b212c70bc6385a96c78685c.pdf
2021-04-21
337
346
10.22034/aej.2021.133967
کپور نقره ای
پروتئین آبکافت شده ماهی
سس مایونز
پایداری امولسیون
خواص حسی
الناز
غفاری چراتی
elnaz.ghaffarii@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات،دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری. ساری. ایران
AUTHOR
سکینه
یگانه
skyeganeh@gmail.com
2
گروه شیلات،دانشکده علوم دامی و شیلات،دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، ساری، ایران
LEAD_AUTHOR
سید علی
جعفرپور
a.jafarpour@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات،دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری. ساری. ایران
AUTHOR
رضا
صفری
safari1351@gmail.com
4
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج جهاد کشاورزی، ساری، ایران
AUTHOR
آمارنامه دریایی ایران. 1396. معاونت علمی و فناوری، ستاد توسعه فناوری و صنایع دانش بنیان دریایی. 162 صفحه.
1
اصغرنیا، م.؛ یگانه، س.؛ جعفرپور، س.ع. و صفری، ر.، 1396. استفاده از روش شیمیایی به منظور تولید پروتئین آبکافت شده از امعاء و احشاء فیتوفاگ (Hypophthalmichthys moltirix) و استفاده از آن به عنوان محیط کشت Listeria monocytogenes. مجله علمی شیلات ایران. دوره 26، شماره 3، صفحات 11 تا 23.
2
امیری عقدایی، س.؛ اعلمی، م. و دارایی گرمه خانی، ا.، 1391 الف. تأثیر استفاده از صمغ کتیرا به عنوان جایگزین چربی بر ویژگی های رئولوژیکی، حسی و بافت سس مایونز کم چرب. نشریه پژوهش های علوم و صنایع غذایی ایران. دوره 8، شماره 2، صفحات 180 تا 189.
3
امیری عقدایی، س.؛ اعلمی، م.؛ صادقی ماهونک، ع. و جعفری، م.، 1391 ب. تأثیر بتاگلوکان جو بدون پوشینه به عنوان مقلد چربی بر ویژگی های فیزیکی شیمیایی، بافتی و حسی سس مایونز کم چرب. نشریه پژوهش های صنایع غذایی. دوره 22، شماره 2، صفحات 141 تا 154.
4
اویسی پور، م.؛ عابدیان کناری، ع.؛ معتمدزادگان، ع . و نظری، ر.، 1389. بررسی خواص پروتئین های هیدرولیزشده امعاء و احشاء ماهی تون زردباله (Thunnus albacore) با استفاده از آنزیم های تجاری. نشریه پژوهش های علوم و صنایع غذایی ایران. دوره 6، شماره 1، صفحات 68 تا 76.
5
اویسی پور، م.ر. و قمی، م.، 1387. بیوتکنولوژی در تولید فرآورده های دریایی (چاپ اول). دانشگاه آزاد اسلامی تنکابن. 192 صفحه.
6
برزگری، م.؛ رفتنی امیری، ز.؛ محمدزاده میلانی، ف. و معتمدزادگان، ع.، 1392. بررسی تأثیر جایگزینی کربوکسی متیل سلولز با صمغ فارسی بر خواص کیفی سس مایونز. نشریه پژوهش و نوآوری در علوم و صنایع غذایی. دوره 2، شماره 4، صفحات 381 تا 392.
7
رفتنی امیری، ز.؛ صفری، ر.؛ بخشنده، ت. و احمدی واوسری، ف.، 1394. تاثیر پروتئین آبکافتی ماهی مرکب بر خصوصیات کیفی ماست قالبی کم چرب. فصلنامه علوم و صنایع غذایی. دوره 13، شماره 56 ، صفحات 11 تا 22.
8
رمضان زاده، ل.؛ حسینی، س.ف. و نیکخواه، م.، 1394. آبکافت آنزیمی ژلاتین پوست ماهی قزل آلای رنگین کمان و ارزیابی خاصیت ضداکسیدانی آن. مجله علوم و فنون شیلات. دوره 5، شماره 2، صفحات 29 تا 44.
9
رهبری، م.؛ اعلمی، م.؛ مقصودلو، ی. و کاشانی نژاد، م.، 1392. بررسی ویژگی های فیزیکوشیمیایی و حسی سس مایونز حاوی ایزوله پروتئین جوانه گندم و صمغ زانتان به عنوان جایگزین تخم مرغ. نشریه پژوهش و نوآوری در علوم و صنایع غذایی. دوره 2، شماره 1، صفحات 1 تا 16.
10
سالنامه آماری سازمان شیلات ایران. 1397-1392. دفتر برنامه ریزی و بودجه. 64 صفحه.
11
شعبانپور، ب.؛ کردجزی، م. و کمری، س.، 1394. تعیین فرمولاسیون کراکر ماهی کپور نقره ای (Hypophthalmichthys molitrix) و بررسی تغییرات کیفی آن طی سه ماه نگه داری در دمای اتاق. شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 68، شماره 4، صفحات 589 تا 602.
12
شکرپور رودباری، ر.؛ معتمدزادگان، ع.؛ حسینی پرور، ه. و اویسی پور، م.، 1389. اثر شدت هیدرولیز بر بازیافت نیتروزنی و اندازه مولکولی پروتئین گوشت کوسه چانه سفید (Carcharhinus dussumieri). مجله الکترونیک فرآوری و نگه داری موادغذایی. دوره 2، شماره 2، صفحات 99 تا 110.
13
طلوعی، ا.؛ مرتضوی، ع.، اعلمی، م. و صادقی ماهونک، ع.، 1390. ویژگی های فیزیکوشیمیایی، بافتی و حسی سس مایونز کم چرب حاوی اینولین و پکتین. مجله علمی پژوهشی علوم و فناوری غذایی. دوره 1، صفحات 35 تا 42.
14
علی عسگری رنانی، ک.؛ یگانه، س.؛ جعفرپور، س.ع. و صفری، ر.، 1396. بهینه یابی پروتئین آبکافت شده سر و بازوی ماهی مرکب ببری (Sepia pharaonis) با استفاده از آنزیم آلکالاز. علوم و فنون شیلات. دوره 6، شماره 2، صفحات 41 تا 55.
15
علی نژاد، م.؛ معتمدزادگان، ع. و رضایی، م.، 1395. خواص کاربردی و فعالیت آنتی اکسیدانی پروتئین هیدرولیزشده کوسه چانه سفید (Carcharhinus dussumieri). فصلنامه علوم و صنایع غذایی. دوره 50، شماره 13، صفحات 159 تا 169.
16
مقصودی، ش.، 1384. تکنولوژی نوین تولید انواع سس. انتشارات مرز دانش. 388 صفحه.
17
Abu Ghoush M.; Samhouri, M.; Al-Holy, M. and Herald, T., 2008. Formulation and fuzzy modeling of emulsion stability and viscosity of a gum-protein emulsifier in a model mayonnaise system. Journal of Food Engineering. Vol. 84, No. 8, pp: 348-357.
18
Anton, M.; Martinet, V.; Dalgararrondo, M.; Beaumal, V.; David-Briand, E. and Rabesona, H., 2003. Chemical and structural characterisation of low-density lipoproteins purified from hen egg yolk. Food Chemistry. Vol. 83, pp: 175-183.
19
AOAC. 2005. Officialmethods of analysis of the association of official analytical chemists Arlington, Association of official analytical chemists.
20
Aspmo, S.I.; Horn, S.J. and Heijsink, V.G., 2005. Enzymatic hydrolysis of Atlantic cod (Gadus morhua L.) viscera. Process Biochemistry. Vol. 40, pp: 1957-1966.
21
Binsi, P.K.; Natasha, N.; Sarkar, P.C.; Ashraf, P.M.; George, N. and Ravishankar, C.N., 2017. Structural, functional and in vitro digestion characteristics of spray dried fish roe powder stabilized with gum arabic. Food Chemistry. Vol. 221, pp: 1698-1708.
22
Elavarasan, K.; Naveen Kumar, V. and Shamasundar, B.A., 2014. Antioxidant and functional properties of fish protein hydrolysates from fresh water carp (Catla catla) as influenced by the nature of enzyme. Journal of Food Processing and Preservation. Vol. 38, No. 3, pp: 1207-1214.
23
Elenice Souza, G.; Maria Louisa, S.; Jane Martha, M.; Katia Setsuko, K.; Adina Celia Borazon, D. and Elaine, G., 2016. Fresh pasta enrichment with protein concentrate of tilapia: nutritional and sensory characteristics Food Science and Technology (Campinas). Vol. 36, No. 1, pp: 76-82.
24
FAO. 2019. Fishery statistical collection. Food and Agriculture Organization of the United Nations. 107 p.
25
Gajanan, P.G.; Elavarasan, K. and Shamasundar, B.A., 2016. Bioactive and functional properties of protein hydrolysates from fish frame processing waste using plant proteases. Environmental Science and Pollution Research. Vol. 23, No. 24, pp: 24901-24911.
26
Harnedy, P.A. and FitzGerald, R.J., 2012. Bioactive peptides from marine processing waste and shellfish: A review. Journal of Functional Foods. Vol. 4, No. 1, pp: 6-24.
27
Herald, T.J.; Abugoush, M. and Aramoun, F., 2009. Physical and sensory properties of egg yolk and egg yolk substitutes in a model mayonnaise system. Journal of Texture Studies. Vol. 40, pp: 692-709.
28
Hoyle, N.T. and Merritte, J.H., 1994. Qyality of Fish Protein Hydrolysates from Herring (Clupea harengus). Journal Of Food Science. Vol. 59, pp: 76-79.
29
Kim, S.K. and Wijesekara, I., 2010. Development and biological activities of marine derived bioactive peptides: A review. Journal of Functional Foods. Vol. 2, No. 1, pp: 1-9.
30
Klampong, V.; Benjakul, S.; Kantachote, D. and Shahidi, F., 2007. Antioxidative activity and functional properties of protein hydrolysate of yellow stripe trevally as influenced by the degree of hydrolysis and enzyme type. Food Chemistry. Vol. 102, No. 4, pp: 1317-1327.
31
Kristinsson, H.G. and Rasco, B.A., 2000a. Biochemical and functional properties of Atlantic salmon (Salmo salar) muscle proteins hydrolyzed with various alkaline proteases. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 48, pp:657-666.
32
Kristinsson, H.G. and Rasco, B.A., 2000b. Fish protein hydrolysates: production, biochemical, and functional properties. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. Vol. 40, pp: 43-81.
33
Kristinsson, H.G. and Rasco, B.A., 2000c. Hydrolysis of salmon muscle proteins by an enzyme mixture extracted from Atlantic salmon (Salmo salar) pyloric caeca. Journal of Food Biochemistry. Vol. 24, pp: 177-187.
34
Liu, H.; Xu, X.M. and Guo, Sh.D., 2007. Rheological, texture and sensory properties of low-fat mayonnaise with different fat mimetics. LWT- Food Science and Technology. Vol. 40, pp: 946-954.
35
Mun, S.; Kim, Y.L.; Kang, C.G.; Park, K.H.; Shim, J.Y. and KIim, Y.R., 2009. Development of reduced-fat mayonnaise using 4GTase-modified rice starch and xanthan gum. International Journal of Biological Macromolecules. Vol. 44, pp: 400-407.
36
Ngo, D.H.; Wijesekara, I.; VO, T.S.; Van Ta, Q. and Kim, S.K., 2011. Marine food derived functional ingredients as potential antioxidants in the food industry: an overview. Food Research International. Vol. 44, No. 2, pp: 523-529.
37
Nikzade, V.; Tehrani, M.M. and Saadatmand-Tarzjan, M., 2012. Optimization of low-cholesterolelow-fat mayonnaise formulation: Effect of using soy milk and some stabilizer by a mixture design approach. Food Hydrocolloids. Vol. 28, pp: 344-352.
38
Nir, L.; Feldman, L.; Aserin, A. and Garti, N., 1994. Surface properties and emulsification behavior of denatured soy protein.Journal of Food Science. Vol. 59, No. 3, pp: 606-607.
39
Ovissipour, M.; Abedian kenari, A.; Motamedzadegan, A.; Rasco, B.; Safari, R. and Shahiri, H., 2009a. The effect of enzymatic hydrolysis time and temperature on the properties of protein hydrolysates from Persian sturgeon (Acipenser persicus) viscera. Food Chemistry. Vol. 115, pp: 238-242.
40
Ovissipour, M.; Safari, R.; Motamedzadegan, A. and Shabanpour, B., 2009b. Chemical and Biochemical Hydrolysis of Persian Sturgeon (Acipenser persicus) Visceral Protein. Food and Bioprocess Technology. Vol. 5, pp: 460-465.
41
Ovissipour, M.; Safari, R.; Motamedzadegan, A.; Rasco, B.; Pourgholam, R.; Mohagheghi, E. and Mola, A.E., 2009c. Use of hydrolysates from yellowfin tuna Thunnus albacares fisheries by-product as a nitrogen source for bacteria growth media. International Aquatic Research. Vol. 1, pp: 73-77.
42
Rehman, S.A.; Akhter, S.; Khan, S.H. and Anjum, M.A., 2016. A comparative study on quality, proximate composition and cholesterol content of eggs and meat in Fayoumi and commercial White Leghorn chickens. Cognet Food and Agriculture. Vol. 2, pp: 1-7.
43
Sathivel, S.; Bechtel, P.J.; Babbitt, J.K.; Prinyawiwatule, W. and Patterson, M., 2005. Functional, Nutritional, and Rheological Properties of Protein Powders from Arrowtooth Flounder and their Application in Mayonnaise. Journal of Food Science, Vol. 70, pp: 57-63.
44
Sathivel, S.; Yin, H.; Bechitel, P.J. and King, J.M., 2009. Physical and nutritional properties of catfish roe spray dried protein powder and its application in an emulsion system. Journal of Food Engineering. Vol. 95, pp: 76-81.
45
Šližyte, R.; Dauksas, E.; Falch, E.; Storro, I. and Rustad, T., 2005. Yield and composition of different fractions obtained after enzymatic hydrolysis of cod (Gadus morhua) by-products. Process Biochemistry. Vol. 40, pp: 1415-1424.
46
Souissi, N.; Bougatef, A.; Triki-Ellouz, Y. and Nasri, M., 2007. Biochemical and functional properties of sardinella (Sardinella aurita) by-product hydrolysates. Food Technology and Biotechnology. Vol. 45, pp: 187-194.
47
Taheri, A.; Anvar, S.A.A.; Ahari, H. and Fogliano, V., 2012. Comparison the functional properties of protein hydrolysates from poultry byproducts and rainbow trout (Onchorhynchus mykiss) viscera. Iranian Journal of Fisheries Science. Vol. 12, No. 1, pp: 154-169.
48
Unnikrishnan, P.; Puthenveetil Kizhakkethil, B.: Anant Jadhav, M.; Sivam, V.; Muhamed Ashraf, P.; Ninan, G. and Aliyamveetil Abubacker, Z., 2019. Protein hydrolysate from yellowfin tuna red meat as fortifying and stabilizing agent in mayonnaise. Journal of Food Science and Technology. Vol. 57, pp: 413-425.
49
Vázquez, J.A.; Rodríguez-Amado, I.; Montemayor, M.I.; Fraguas, J.; González, M.P. and Murado, M.A., 2013. Chondroitin Sulfate, Hyaluronic Acid and Chitin/Chitosan Production Using Marine Waste Sources: Characteristics, Applications and Eco-Friendly Processes: A Review. Marine Drugs. Vol. 11, No. 3, pp; 747-774.
50
Venugopal, V. and Shahidi, F., 1996. Structure and composition of fish muscle. Journal of Food Technology and Enzyme Engineering Division. Vol. 12, pp: 175-197.
51
Worrasinchai, S.; Suphantharika, M.; Pinjai, S. and Jamnong, P., 2006. β-Glucan prepared from spent brewer’s yeast as a fat replacer in mayonnaise. Food Hydrocolloids. Vol. 20, pp: 68-78.
52
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تاثیر جایگزینی کنجاله کانولا به جای پودر ماهی در جیره غذایی ماهی پاکو قرمز (Piaractus brachypomus) بر عملکرد رشد، قابلیت هضم مواد مغذی و شاخص های خونی- ایمنی غیراختصاصی
پودر ماهی از مهم ترین ترکیبات موجود در جیره های غذایی آبزیان محسوب می شود. آزﻣﺎیشی 63 روزه جهت بررسی تاثیر ﺳﻄﻮح ﻣﺨﺘﻠﻒ (10، 20، 30، 40، 50 و 100 درﺻﺪ) ﺟﺎﻳﮕﺰﻳﻨﻲ پروتئین ﻛﻨﺠﺎﻟﻪ ﻛﺎﻧﻮﻻ ﺑﺎ ﭘﻮدر ماهی در جیره غذایی ماهی ﭘﺎﻛﻮ (Piaractus brachypomus، گرم 1/36±45/12) ﺑﺮ ﺷﺎخص های ﻋﻤﻠﻜﺮد رﺷﺪ، ﺿﺮﻳﺐ ﺗﺒﺪﻳﻞ ﻏﺬاﻳﻲ، میزان ﺑﻘﺎ، میزان قابلیت هضم جیره، فعالیت آنزیم های گوارشی و ﻛﺒﺪى و شاخص های هماتوایمنولوژیکی اﻧﺠﺎم ﺷﺪ. بیش ترین میزان معنی داری (0/05>p) وزن نهایی و میزان رﺷﺪ وﻳﮋه و کم ترین ﻣﻘﺪار ﺿﺮﻳﺐ ﺗﺒﺪﻳﻞ ﻏﺬاﻳﻲ در ماهیان ﭘﺎﻛﻮى ﺗﻐﺬﻳﻪ ﺷﺪه ﺑﺎ 40 درﺻﺪ ﻛﻨﺠﺎﻟﻪ ﻛﺎﻧﻮﻻ به دﺳﺖ آﻣﺪ. ﺑﺎ اﻓﺰاﻳﺶ ﺳﻄﺢ اﺳﺘﻔﺎده از ﻛﻨﺠﺎﻟﻪ ﻛﺎﻧﻮﻻ ﻧﺴﺒﺖ ﺗﺮى یدوتیرونین ﺑﻪ تیروکسین در ﺳﺮم ﺧﻮن ﻣﺎهیان ﭘﺎﻛﻮى ﺗﻐﺬﻳﻪ ﺷﺪه از 20 تا 100 درصد ﻧﺴﺒﺖ ﺑﻪ شاهد به طور معنی دارى اﻓﺰاﻳﺶ ﻳﺎﻓﺖ (0/05>p). روﻧﺪ ﻛﺎهشی معنی دارى در میزان ﻛﻠﺴﺘﺮول ﺗﺎم، ﺗﺮى گلیسرید، لیپوپروتئین های ﺑﺎ ﭼﮕﺎلی ﭘﺎیین و بسیار پایین در ﺳﺮم ﺧﻮن ﻣﺎهیان ﭘﺎﻛﻮ ﺑﺎ اﻓﺰاﻳﺶ ﺳﻄﺢ اﺳﺘﻔﺎده از ﻛﻨﺠﺎﻟﻪ ﻛﺎﻧﻮﻻ ﻣﺸﺎهده ﺷﺪ (0/05>p). ﺣﺪاﻛﺜﺮ ﻣﻘﺪار ﻗﺎﺑﻞ ﺗﺤﻤﻞ ﮔﻠﻮﻛﻮسینولات و فیتات در جیره غذایی ﻣﺎهی ﭘﺎﻛﻮ ﻛﻪ ﻣﻨﺠﺮ ﺑﻪ بیش ترین میزان رﺷﺪ وﻳﮋه و ﺿﺮﻳﺐ ﺗﺒﺪﻳﻞ ﻏﺬایی می ﺷﻮد، ﺑﻪ ترتیب در داﻣﻨﻪ 5/22-4/90 میکروﻣﻮل ﺑﺮ ﮔﺮم ﻣﺎده ﺧﺸﻚ و 6/52-6/12 ﮔﺮم ﺑﺮ کیلوﮔﺮم ﻗﺮار دارد. ﺑﺎ اﻓﺰاﻳﺶ ﺳﻄﺢ اﺳﺘﻔﺎده از ﻛﻨﺠﺎﻟﻪ ﻛﺎﻧﻮﻻ میزان فعالیت آنزیم های ﮔﻮارشی آمیلاز، لیپاز و تریپسین در روده ﻣﺎهیان ﭘﺎﻛﻮى آزﻣﺎیشی به طور معنی دارى اﻓﺰاﻳﺶ ﻳﺎﻓﺖ (0/05>p). ﺑﺮﺣﺴﺐ تکنیک ﺧﻂ ﺷﻜﺴﺘﻪ، بیش ترین میزان رﺷﺪ وﻳﮋه (1/91 درﺻﺪ وزن ﺑﺪن در روز) ﺑﺎ اﺳﺘﻔﺎده از 40/2 درﺻﺪ ﺟﺎﻳﮕﺰینی ﭘﻮدرﻣﺎهی ﺑﺎ ﻛﻨﺠﺎﻟﻪ ﻛﺎﻧﻮﻻ به دﺳﺖ آمد.
http://www.aejournal.ir/article_134028_5a20632cc553ff9d17f240097907cf79.pdf
2021-04-21
347
362
10.22034/aej.2021.134028
ﻣﺎهی ﭘﺎﻛﻮ
ﻛﻨﺠﺎﻟﻪ ﻛﺎﻧﻮﻻ
ﻋﻤﻠﻜﺮد رﺷﺪ
اﻳﻤﻨﻲ
ﻗﺎبلیت هضم
آﻧﺰﻳﻢ های ﮔﻮارﺷﻲ
حسین
نظری
hnazarishilat@gmail.com
1
گروه شیلات و منابع طبیعی، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
علیرضا
سالارزاده
reza1375bandar@yahoo.com
2
گروه شیلات و منابع طبیعی، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
امید
صفری
omidsafari@um.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه فردوسی مشهد، مشهد، ایران
AUTHOR
مازیار
یحیوی
m.yahyavi@iauba.ac.ir
4
گروه شیلات و منابع طبیعی، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
Ahmadi, K.; Gholizadeh, H.A.; Ebadzadeh, H.R.; Hatami, F.; Fazli-Estabragh, M.; Hosseinpour, R.; Kazemian, A. and Rafiee, M., 2017. Iranian agriculture statistics in 2015-2016, first. ed. Agriculture Department Publication. Tehran. Iran.
1
Amadou, I.; Kamara, M.T.; Tidjani, A. and Foh, M.B.K., 2010. Physicochemical and nutritional analysis of fermented soybean protein meal by lactobacillus plantarum Lp6. World J Dairy Food Sci. Vol. 5, pp: 114-118.
2
AOAC. 2005. Association of Official Analytical Chemists (AOAC). Official Methods of Analysis, 18th ed. Association of Official Analytical Chemists. AOAC International, Maryland, USA.
3
Azevedo, P.A.; Leeson, S.; Cho, C.Y. and Bureau, D.P., 2004. Growth, nitrogen and energy utilization of juveniles from four salmonid species: Diet, species and size effects. Aquaculture. Vol. 234, pp: 393-414.
4
Bransden, M.P.; Carter, C.G. and Nowak, B.F., 2001. Effects of dietary protein source on growth, immune function, blood chemistry and disease resistance of Atlantic salmon (Salmo salar L.) parr. Anim. Sci. Vol. 73, pp: 105-113.
5
Bulbul, M.; Koshio, S.; Ishikawa, M.; Yokoyama, S. and Kader, M.A., 2013. Performance of kuruma shrimp, fed diets replacing fish meal with a combination of plant meals. Aquaculture. Vol. 372, pp: 45-51.
6
Burel, C.; Boujard, T.; Kaushik, S.J.; Boeuf, G.; Van Der Geyten, S.; Mol, K.A.; Kuhn, E.R.; Quinsac, A.; Krouti, M. and Ribailler, D., 2001. Effects of rapeseed meal Glucosinolates on Thyroid metabolism and feed utilization in rainbow trout. Gen. Com. Endocrinol. Vol. 124, pp: 343-358.
7
Cahu, C.; Zambonino Infante, J.; Quazuguel, P. and Le Gall, M., 1999. Protein hydrolysate vs. fish meal in compound diets for 10-day old sea bass Dicentrarchus labrax larvae. Aquaculture. Vol. 171, pp: 109-119.
8
Cai, C.; Song, L.; Wang, Y.; Wu, P.; Ye, Y.; Zhang, Z. and Yang, C., 2013. Assessment of the feasibility of including high levels of rapeseed meal and peanut meal in diets of juvenile crucian carp (Carassius auratus gibelio♀ × Cyprinus carpio ♂) Growth immunity, intestinal morphology & microflora. Aquaculture. Vol. 410, pp: 203-215.
9
Calabrese, E.J. and Baldwin, L.A., 2003. Toxicology rethinks its central belief. Nature. Vol. 421, pp: 691-692.
10
Cech, J.; McCormick, S. and McKinlay, D., 2000. Energy reserves and nutritional status of juvenile Chinook salmon emigrating from the Snake River, Intern. Cong. Biol. Fish, Univ. Aberdeen, Scotl. pp: 23-27.
11
Cheng, N.; Chen, P.; Lei, W.; Feng, M. and Wang, C., 2016. The sparing effect of phytase in plant‐protein‐based diets with decreasing supplementation of dietary NaH2PO4 for juvenile yellow catfish Pelteobagrus fulvidraco. Aquac. Res. Vol. 47, No. 12, pp: 3952-3963.
12
Clerton, P.; Troutaud, D.; Verlhac, V.; Gabaudan, J. and Deschaux, P., 2001. Dietary vitamin E and rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) phagocyte functions: effect on gut and on head kidney leucocytes. Elsevier.
13
Da, C.T.; Lundh, T. and Lindberg, J.E., 2013. Digestibility of dietary components and amino acids in animal and plant protein feed ingredients in striped catfish fingerlings. Aquac. Nutr. Vol. 19, No. 5, pp: 741-750.
14
Daniel, N.; Angela Mercy, A.; Nageswari, P. and Ezhilarasi, D.R., 2016. Perspectives of genetically modified plants for the expansion of plant feedstuffs in aquaculture. Aquac. times. Vol. 2, No. 2, pp: 8-13.
15
Dawood, M.A.; El-Dakar, A.; Mohsen, M.; Abdelraouf, E.; Koshio, S.; Ishikawa, M. and Yokoyama, S., 2014. Effects of using exogenous digestive enzymes or natural enhancer mixture on growth, feed utilization, and body composition of rabbitfish, Siganus rivulatus. J. Agric. Sci. Technol. B. Vol. 4, No. 3B.
16
Dawood, M.A.O.; Koshio, S.; Ishikawa, M. and Yokoyama, S., 2015. Effects of partial substitution of fish meal by soybean meal with or without heat-killed Lactobacillus plantarum (LP20) on growth performance, digestibility, and immune response of Amberjack, Seriola dumerili juveniles. BioMed Res. Int.
17
Ding, Z.; Zhang, Y.; Ye, J.; Du, Z. and Kong, Y., 2015. An evaluation of replacing fish meal with fermented soybean meal in the diet of Macrobrachium nipponense : Growth , nonspecific immunity , and resistance to Aeromonas hydrophila. Fish Shellfish Immunol. pp: 1-7.
18
Dossou, S.; Koshio, S.; Ishikawa, M.; Yokoyama, S.; Dawood, M.A.O.; El Basuini, M.F.; El-Hais, A.M. and Olivier, A., 2018a. Effect of partial replacement of fish meal by fermented rapeseed meal on growth, immune response and oxidative condition of red sea bream juvenile, Pagrus major. Aquaculture. doi:10.1016/j.aquaculture.2018.02.010
19
Dossou, S.; Koshio, S.; Ishikawa, M.; Yokoyama, S.; Dawood, M.A.O.; El Basuini, M.F.; Olivier, A. and Zaineldin, A.I., 2018b. Growth performance, blood health, antioxidant status and immune response in red sea bream (Pagrus major) fed Aspergillus oryzae fermented rapeseed meal (RM-Koji). Fish shellfish immunol. Vol. 75, pp: 253-262.
20
Eales, J.G. and Brown, S.B., 1993. Measurement and regulation of thyroidal status in teleost fish. Biol. Fish. Vol. 3, pp: 299-347.
21
Espe, M.; Rathore, R.M.; Du, Z.Y.; Liaset, B. and El Mowafi, A., 2010. Methionine limitation results in increased hepatic FAS activity, higher liver 18:1 to 18:0 fatty acid ratio and hepatic TAG accumulation in Atlantic salmon, Salmo salar. Amin. acids. Vol. 39, No. 2, pp: 449-460.
22
Essa, A.M.; Mabrouk, A.H. and Zaki, A.M., 2004. Growth performance of grass carp, Ctenopharyngodon idella and hybrid grass carp fingerlings fed on different types of aquatic plants and artificial diet in concrete basins. Egypt. J. Aquat. Res. Vol. 30, No. B, pp: 341-348.
23
FAO. 2016. The State of World Fisheries and Aquaculture (SOFIA). Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome, Italy.
24
FAO. 2014. Psetta maxima (Linnaeus, 1758). Statistical information, global aquaculture production 1950-2012: Fisheries and Aquaculture Department. Rome, Italy.
25
Farhangi, M. and Carter, C.G., 2007. Effect of enzyme supplementation to dehulled lupin- based on growth, feed efficiency, nutrient digestibility and carcass composition of rainbow trout. Aquac. Res. Vol. 38, pp: 1274-1282.
26
Folch, J.; Lees, M. and Stanley, G.H.S., 1957. A simple method for the isolation and purification of total lipids from animal tissues. J Biol Chem. doi:10.1007/s10858.011.9570.9.
27
Francis, G.; Makkar, H.P.S. and Becker, K., 2001. Antinutritional factors present in plant-derived alternate fish feed ingredients and their effects in fish. Aquaculture. Vol. 199, pp: 197-227.
28
Frias, J.; Song, Y.S. and Martínez-Villaluenga, C., 2008. Immunoreactivity and amino acid content of fermented soybean products. J. Agric. Food Chem. Vol. 56, pp: 99-105.
29
Galicia-González, A.; Goytortúa-Bores, E.; Palacios, E.; Civera-Cerecedo, R.; Moyano-López, F.J.; Cruz-Suárez, L.E. and Ricque-Marie, D., 2010. Chemical Composition and Digestibility of Three Mexican Safflower Meals Used as Ingredients in Diets for Whiteleg Shrimp, Litopenaeus vannamei. J. World Aquac. Soc. Vol. 41, pp: 191-202.
30
Gatlin III, D.M.; Barrows, F.T.; Brown, P.; Dabrowski, K.; Gaylord, T.G.; Hardy, R.W.; Herman, E.; Hu, G.; Krogdahl, A.; Nelson, R.; Overturf, K.; Rust, M.; Sealey, W.; Skonberg, D.; Souza, E.; Stone, D.; Wilson, R. and Wurtele, E., 2007. Expanding the utilization of sustainable plant products in aquafeeds. Aquac. Res. pp: 551-579.
31
Gerzhova, A.; Mondor, M.; Benali, M. and Aider, M., 2015. A comparative study between the electro-activation technique & conventional extraction method on the extractability, composition & physicochemical properties of canola protein concentrates and isolates. Food Biosci. Vol. 11, pp: 56-71.
32
Glencross, B.; Hawkins, W.; Evans, D.; Rutherford, N.; Dods, K.; Maas, R.; McCafferty, P. and Sipsas, S., 2006. Evaluation of the nutritional value of prototype lupin protein concentrates when fed to rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 251, pp: 66-77.
33
Glencross, B.D.; Booth, M. and Allan, G.L., 2007. A feed is only as good as its ingredients-a review of ingredient evaluation strategies for aquaculture feeds: Aquac. Nutr. Vol. 13, pp: 17-34. doi:10.1111/j.1365-2095.2007.00450.x
34
Grant, G.; Alonso, R.; Edwards, J.E. and Murray, S., 2000. Dietary soya beans & kidney beans stimulate secretion of cholecystokinin and pancreatic digestive enzymes in 400 day-old hooded-lister rats but only soya beans induce growth of the pancreas. Pancreas. Vol. 20, pp: 305-312.
35
Hardy, R.W., 2010. Utilization of plant proteins in fish diets: effects of global demand and supplies of fishmeal. J. Aquac. Res. Vol. 41, pp: 770-776.
36
Hardy, R.W. and Barrows, F.T., 2002. Diet formulation and manufacture. Fish Nutr. pp: 505-600. doi:10.1016/B978. 012319652-1/50010-0.
37
Hemre, G.I.; Mommsen, T.P. and Krogodahl, A., 2002. Carbohydrates in fish nutrition: effects on growth, glucose metabolism and hepatic enzymes. Aquac. Nutr. Vol. 8, pp: 175-194. doi:10.1046/j.1365-2095.2002.00200.x
38
Higgs, D.A., 1995. Chapter II.Use of rapeseed / canola protein products in finfish diets .In : Sessa, D. and Lim, C., (eds). AOAC Monogr. entitled Nutr. Util. Technol. Aquac.
39
Hisano, H.; Pilecco, J.L. and De, L., 2016. Corn gluten meal in pacu Piaractus mesopotamicus: Aquac. Int. Vol. 24, No. 4, pp: 1049-1060.
40
Hong, K.J.; Lee, C.H. and Kim, S.W., 2004. Aspergillus oryzae GB-107 fermentation improves nutritional quality offood soybeans and feed soybean meals. J. Med. Food. Vol. 7, pp: 430-435. doi:10.1089/jmf.2004.7.430.
41
Jahanbakhshi, A.; Imanpoor, M.R.; Taghizadeh, V. and Shabani, A., 2013. Hematological and serum biochemical indices changes induced by replacing fish meal with plant protein (sesame oil cake & corn gluten) in the Great sturgeon (Huso huso). Comp. Clin. Path. Vol. 22, pp: 1087-1092.
42
Jhansi LakshmiBai, T.C. and Ravindra Kumar Reddy, D., 2016. Comparison of effects of cotton seed meal with fish meal on growth , feed conversion ratio and survival of red bellied Pacu (Piaractus Brachypomus). Int. J. Sci. Environ. Technol. Vol. 5, pp: 1092-1099.
43
Jiang, T.T.; Feng, L.; Liu, Y.; Jiang, W.D.; Jiang, J. and Li, S.H., 2014. Effects of exogenous xylanase supplementation in plant protein‐enriched diets on growth performance, intestinal enzyme activities and microflora of juvenile Jian carp. Aquac. Nutr. Vol. 20, No. 6, pp: 632-645.
44
Kaushik, S.J.; Cravedi, J.P.; Lalles, J.P.; Sumpter, J.; Fauconneau, B. and Laroche, M., 1995. Partial or total replacement of fish meal by soybean protein on growth, protein utilization, potential estrogenic or antigenic effects, cholesterolemia and flesh quality in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Aquaculture. Vol. 133, pp: 257-274.
45
Kim, D.H. and Austin, B., 2006. Innate immune responses in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) induced by probiotics. Fish & shellfish immunol. Vol. 21, pp: 513-524.
46
Kim, S.S.; Galaz, G.B.; Pham, M.A.; Jang, J.W.; Oh, D.H.; Yeo, I.K. and Lee, K.J., 2009. Effects of dietary supplementation of a meju , fermented soybean meal , and Aspergillus oryzae for juvenile parrot fish (Oplegnathus fasciatus ). Vol. 22, pp: 849-856.
47
Kim, S.S.; Pham, M.A.; Kim, K.W.; Son, M.H. and Lee, K.J., 2010. Effects of microbial fermentation of soybean on growth performances, phosphorus availability & antioxidant activity in diets for Juvenile olive flounder (Paralichthys olivaceus). Vol. 19, pp: 1605-1610.
48
Krogdahl, Å.; Bakke McKellep, A.M. and Baeverfjord, G., 2003. Effects of graded levels of standard soybean meal on intestinal structure, mucosal enzyme activities and pancreatic response in Atlantic salmon (Salmo salar). Aquac. Nutr. pp: 361-371.
49
Kumar, V.; Sinha, A.K.; Makkar, H.P.S. and Becker, K., 2010. Dietary roles of phytate and phytase in human nutrition. A review. Food Chem. Vol. 120, pp: 945-959.
50
Kuz’mina, V.; Shekovtsova, N. and Bolobonina, V., 2010. Activity dynamics of proteinases and glycosidases of fish chyme with exposure in fresh and brackish water. Biol. Bull. Vol. 37, pp: 605-611.
51
Lazzarotto, V.; MeÂdale, F.; Larroquet. L. and Corraze. G., 2018. Long-term dietary replacement of fishmeal and fish oil in diets for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): Effects on growth, whole body fatty acids and intestinal and hepatic gene expression. PLoS ONE. Vol. 13, No. 1, pp: e0190730.
52
Lee, S.M.; Azarm, H.M. and Chang, K.H., 2016. Effects of dietary inclusion of fermented soybean meal on growth, body composition, antioxidant enzyme activity and disease resistance of rockfish. Aquaculture. Vol. 459, pp: 110-116.
53
Lichon, M.J., 1996. Sample preparation, in: Nollet, L.M.L., (Ed.), Handbook of Food Analysis. Marcel Dekker. New York. pp: 1-19.
54
Lie, K.K.; Hansen, A.C.; Eroldogan, O.T.; Olsvik, P.A.; Rosenlund, G. and Hemre, G.I., 2011. Expression of genes regulating protein metabolism in Atlantic cod (Gadus morhua L.) was altered when including high diet levels of plant proteins. Aquac. Nutr. Vol. 17, No. 1, pp: 33-43.
55
Lochmann, R.; Chen, R.; Chu-Koo, F.W.; Camargo, W.N.; Kohler, C.C. and Kasper, C., 2009. Effects of carbohydrate- rich alternative feedstuffs on growth, survival, body composition, hematology, and nonspecific immune response of black pacu, Colossoma macropomum, and red Pacu. J. World Aquacult. Soc. Vol. 40, pp: 33-44.
56
Lund, I.; Dalsgaard, J.; Rasmussen, H.T.; Holm, J. and Jokumsen, A., 2011. Replacement of fish meal with a matrix of organic plant proteins in organic trout (Oncorhynchus mykiss) feed, and the effects on nutrient utilization and fish performance. Aquaculture. Vol. 321, No. 3, pp: 259-266.
57
McQuaker, N.R.; Brown, D.F. and Kluckner, P.D., 1979. Digestion of environmental materials for analysis by inductively coupled plasma-atomic emission spectrometry. Anal. Chem. Vol. 51, pp: 1082-1084.
58
Mente, E.; Karalazos, V.; Karapanagiotidis, I.T. and Pita, C., 2011. Nutrition in organic aquaculture: An inquiry and a discourse. Aquac. Nutr. Vol. 17, pp: 798-817.
59
Nageswari, P. and Daniel, N., 2015. Dietary Roles of Nucleotides in Aquaculture. Aqua Int. Vol. 12, pp: 51-52.
60
Narayanan, S., 1982. Method-comparison studies on immunoglobulins. Clin. Chem. Vol. 28, pp: 1528-1531.
61
Nascimento, A.F.; Maria, A.N.; Pessoa, N.O.; Carvalho, M.A.M. and Viveiros, A.T.M., 2010. Out-of- season sperm cryopreserved in different media of the Amazonian freshwater fish pirapitinga (Piaractus brachypomus). Anim. Reprod. Sci. Vol. 118, pp: 324-329.
62
Nazari, H.; Salarzadeh, A.; Safari, O. and Yahyavi, M., 2018. Screening of selected feedstuffs by juvenile pacu, Piaractus brachypomus. Aquac. Nutr. Vol. 10. pp: 1111.
63
Ngo, D.T.; Wade, N.M.; Pirozzi, I. and Glencross, B.D., 2016. Effects of canola meal on growth, feed utilisation, plasma biochemistry, histology of digestive organs and hepatic gene expression of barramundi (Asian seabass: Lates calcarifer). Aquaculture. Vol. 464, pp: 95-105.
64
Panserat, S.; Hortopan, G.A.; Plagnes-Juan, E.; Kolditz, C.; Lansard, M.; Skiba-Cassy, S.; Esquerré, D.; Geurden, I.; Médale, F.; Kaushik, S. and Corraze, G., 2009. Differential gene expression after total replacement of dietary fish meal and fish oil by plant products in rainbow trout liver. Aquaculture. Vol. 294, pp: 123-131.
65
Pérez-Jiménez, A.; Guedes, M.J.; Morales, A.E. and Oliva-Teles, A., 2007. Metabolic responses to short starvation and refeeding in (Dicentrarchus labrax). Effect of dietary composition. Aquaculture. Vol. 265, pp: 325-335.
66
Potter, S.M., 1998. Soy protein and cardiovascular disease: the impact of bioactive components in soy. Nutr. Rev. Vol. 56,pp: 231-235.
67
Quinsac, A.; Ribaillier, D.; Elfakir, C.; Lafosse, M. and Dreux, M., 1991. A new approach to the study of glucosinolates by isocratic liquid chromatography. Rapid determination of desulfated derivatives of rapeseed glucosinolates. J. A. Off. Anal. Chem. Vol. 74, pp: 932-939.
68
Racicot, J.G.; Gaudet, M. and Leray, C., 1975. Blood and liver enzymes in rainbow trout with emphasis on their diagnostic use: study of CCl۴ toxicity and a case of Aeromonas infection. J. Fish Biol. Vol. 7, pp: 825-835.
69
Refstie, S.; Svihus, B.; Shearer, K.D. and Storebakken, T., 1999. Nutrient digestibility in Atlantic salmon and broiler chickens related to viscosity and non-starch polysaccharide content in different soyabean products. Anim. Feed Sci. Technol. Vol. 79, pp: 331-345.
70
Řehulka, J.; Minařik, B.; Adamec, V. and Řehulkova, E., 2005. Investigations of physiological and pathological levels of total plasma protein in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Aquac. Res. Vol. 36, pp: 22-32.
71
Richard, L.; Surget, A.; Rogolet, V.; Kaushik, S. and Geurden, I., 2011. Availability of essential amino acids, nutrient utilization and growth in juvenile tiger shrimp, Penaeus monodon, following fishmeal replacement by plant protein. Aquaculture. Vol. 322-323, pp: 109-116.
72
Rolland, M.; Larsen, B.K.; Holm, J.; Dalsgaard, J. and Skov, P.V, 2015. Effect of plant proteins and crystalline amino acid supplementation on postprandial plasma amino acid profiles and metabolic response in rainbow trout. Aquac. Int. Vol. 23, No. 4, pp: 1071-1087.
73
Rungruangsak-Torrissen, K.; Moss, R.; Andersen, L.; Berg, A. and Waagbo, R., 2006. Different expressions of trypsin and chymotrypsin in relation to growth in Atlantic salmon. Fish Physiol. Biochem. Vol. 32, pp: 7-23.
74
Saedi, M.; Sajjadi, M.; Hosseinzadeh, H. and Emadi, H., 2012. Effect of replacing fish meal by soybean meal in diet of red Pacu (Piaractus brachypomus). J. Mar. Sci. Technol. pp: 47-55.
75
Safari, O., 2011. Study on the production of canola protein concentrate through different processing methods (physical, chemical and biological) with aim of using in the diet of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). University of Tehran.
76
Safari, O,; Bagheri Doorbadam, J. and Naserizadeh, M., 2014. Study of plasma sex steroid hormones in female snow trout within a year. J. Vet. Res. Vol. 69, pp: 423-430.
77
Safari, O.; Naserizadeh, M. and Mohammadi Arani, M., 2016. Digestibility of selected feedstuffs in subadult Caspian great sturgeon, Huso huso using settlement faecal collection and stripping methods. Aquac. Nutr. Vol. 22, pp: 293-303.
78
Safari, O.; Shahsavani, D.; Paolucci, M. and Mehraban Sang Atash, M., 2014. Screening of selected feedstuffs by sub-adult narrow clawed crayfish, Astacus leptodactylus leptodactylus. Aquaculture. Vol. 420-421, pp: 211-218.
79
Sarker, M.; Alam, S.; Satoh, S., Kamata, K.; Haga, Y. and Yamamoto, Y., 2012. Supplementation effect (s) of organic acids and/or lipid to plant protein‐based diets on juvenile yellowtail, Seriola quinqueradiata Temminck et Schlegel 1845, growth and, nitrogen and phosphorus excretion. Aquac. Res. Vol. 43, No. 4, pp: 538-545.
80
Saurabh, S. and Sahoo, P.K., 2008. Lysozyme: An important defence molecule of fish innate immune system. Aquac. Res. Vol. 39, pp: 223-239.
81
Shahidi, F., 1990. Canola and rapeseed: Production, Chemistry, Nutrition and Processing Technology. Van Nostrand Reinhold. 335 p.
82
Shi, X.; Chen, F.; Chen, G.H.; Pan, Y.X.; Zhu, X.M.; Liu, X. and Luo, Z., 2017. Fishmeal can be totally replaced by a mixture of rapeseed meal and Chlorella meal in diets for crucian carp (Carassius auratus gibelio). Aquac. Res. doi:10.1111/are.13364
83
Slawski, H.; Adem, H.; Tressel, R.; Wysujack, K.; Koops, U. and Schulz, C., 2011. Replacement of Fishmeal by Rapeseed Protein Concentrate in Diets for Common Carp (Cyprinus carpio L.). Isr. J. Aquac. Vol. 63.
84
Snyder, G.S.; Gaylord, T.G., Barrows, F.T.; Overturf, K.; Cain, K.D. and Hill, R.A., 2012. Effects of carnosine supplementation to an all-plant protein diet for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 338, pp: 72-81.
85
Song, Z.; Li, H.; Wang, J., Li, P.; Sun, Y. and Zhang, L., 2014. Effects of fishmeal replacement with soy protein hydrolysates on growth performance, blood biochemistry, gastrointestinal digestion and muscle composition of juvenile starry flounder. Aquaculture Vol. 426-427, pp: 96-104.
86
Squires, E., 2003. Manipulation of growth and carcass composition. Appl. Anim. Endocrinol. pp: 66-123.
87
Suplicy, F.M., 2007. Freshwater fish seed resources in Brazil, in: Bondad-Reantaso, M.G., (Ed.), Assessment of Freshwater Fish Seed Resources for Sustainable. Aquaculture. pp: 129-143.
88
Taheri Kondor, O.A.; Sajjadi, M.; Sourinejad, I.; Daryaei, A.; Khademi, F. and Mirzadeh, G., 2014. The effect of dietary supplementation of L-carnitine on resistance to temperature and salinity stresses in Sobaity seabream Sparidentex hasta. J. Fish. Vol. 67, pp: 585-597.
89
Thiessen, D.L.; Maenz, D.D.; Newkirk, R.W.; Classen, H.L. and Drew, M.D., 2004. Replacement of fishmeal by canola protein concentrate in diets fed to rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquac. Nutr. Vol. 10, pp: 379-388.
90
USDA. 2017. Oilseeds:World Markets and Trade. US Department of agriculture. Foreign agricultural service, Washington, DC, USA.
91
Valente, L.M.; Cabral, E.M.; Sousa, V.; Cunha, L.M. and Fernandes, J.M., 2016. Plant protein blends in diets for Senegalese sole affect skeletal muscle growth, flesh texture and the expression of related genes. Aquaculture. Vol. 453, pp: 77-85.
92
Waley, K. and North, J., 1997. Haemolytic assays for whole complement activity and individual components. In: (Dodds, A.W. and Sim, R.B., eds.), Complement: A Pract. Approach, Univ. Press. Oxford, Gt. Britain. Vol. 1, pp: 19-47.
93
Webster, C. and Lim, C., 2002. Nutrient requirements and feeding of finfish for aquaculture.
94
Welker, T.; Barrows, F.; Overturf, K.; Gaylord, G. and Sealey, W., 2016. Optimizing zinc supplementation levels of rainbow trout fed practical type fishmeal and plant based diets. Aquac. Nutr. Vol. 22, No. 1, pp: 91-108.
95
Worthington, C.C., 1991. Worthington enzyme manual related biochemical, 3rd edn. Worthingt. Biochem. Corp. Free. NJ pp: 212-215.
96
Yamamoto, M.; Saleh, F.; Tahir, M.; Ohtsuka, A. and Hayashi, K., 2007. The effect of Koji-feed (fermented distillery by-product) on the growth performance and nutrient metabolizability in broiler. J. Poult. Sci. Vol. 44, pp: 291-296.
97
Yamamoto, T. and Yonemasu, K., 1999. Multiple molecular forms of serum immunoglobulin M in apatient withWaldenstro¨m’s macroglobulinemia. Clin. Chim. Acta. Vol. 289, pp: 173-176.
98
Yan, J.; Li, Y.; Liang, X.; Zhang, Y.; Dawood, M.A.O.; Matuli’c, D. and Gao, J., 2017. Effects of dietary protein and lipid levels on growth performance, fatty acid composition and antioxidant-related gene expressions in juvenile loach. Aquac. Res. Vol. 48, No. 10, pp: 5385-5393.
99
Yang, S.D.; Liu, F.G. and Liou, C.H., 2012. Effects of dietary L-carnitine, plant proteins and lipid levels on growth performance, body composition, blood traits and muscular carnitine status in juvenile silver perch (Bidyanus bidyanus). Aquaculture. Vol. 342, pp: 48-55.
100
Yigit, N.O. and Olmez, M., 2009. Canola meal as an alternative protein source in diets for fry of tilapia. Isr. J. Aquac. Bamidgeh. Vol. 61, pp: 35-41.
101
Yokoyama, Y.; Toth, B. and Ktchens, W., 2003. Role of thromboxane in producing portal hypertension following trauma hemorrhage. Am J Physiol, Gastrointest. liver Physiol. pp: 1294-1299.
102
Zar, J.H., 1999. Biostatistical analysis. Prentice-Hall, Inc. New Jersy, USA.
103
Zhang, Y.; Øverland, M.; Shearer, K.D.; Sørensen, M.; Mydland, L.T. and Storebakken, T., 2012. Optimizing plant protein combinations in fish meal-free diets for rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) by a mixture model. Aquaculture. Vol. 360-361, pp: 25-36.
104
Zhang, H.; Yi, L.; Sun, R.; Zhou, H.; Xu, W. and Zhang, W., 2016. Effects of dietary citric acid on growth performance, mineral status and intestinal digestive enzyme activities of large yellow croaker fed high plant protein diets. Aquaculture. Vol. 453, pp: 147-153.
105
Zhou, Q.L.; Habte Tsion, H.M.; Ge, X.; Xie, J.; Ren, M.; Liu, B.; Miao, L. and Pan, L., 2018. Graded replacing fishmeal with canola meal in diets affects growth and target of rapamycin pathway gene expression of juvenile blunt snout bream. Aquac. Nutr. Vol. 24, pp: 300-309.
106
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات مواجهه با دوزهای تحت کشنده سم اندوسولفان بر روی فاکتورهای بیوشیمیایی سرم خون در ماهی زبرای گورخری (Danio rerio)
بسیاری از آفت کش ها پس از استفاده در کشاورزی به اکوسیستم های آبی راه پیدا می کنند و از آن به بعد، به عنوان آلاینده های زیست محیطی ایفای نقش می کنند. پارامترهای بیوشیمیایی خون ماهی از متداول ترین عواملی هستند که در صورت بروز آلودگی تحت تاثیر قرار می گیرند. در این مطالعه تاثیر دوزهای تحت کشنده سم آندوسولفان (16، 32 و 64 میکروگرم بر لیتر) بر فاکتورهای بیوشیمیایی سرم خون در ماهی زبرای گورخری (Danio rerio) پس از گذشت 1، 2، 7 و 14 روز بررسی شد. فعالیت آلکالین فسفاتاز، آلانین آمینوترانسفراز، آسپارتات آمینو ترانسفراز، کلسترول، گلوکز، افزایش معنی داری را نسبت به تیمار شاهد نشان داد (0/05≥p ). فعالیت آلبومین نیز کاهش معنی داری (0/05≤p ) را نسبت به تیمار شاهد نشان داد. فعالیت پروتئین هم در روز اول مواجهه با سم اندوسولفان افزایش معنی داری (0/05≥p ) را در تیمارها نسبت به تیمار شاهد نشان داد، اما در روزهای 2، 7 و 14 تفاوت معنی داری مشاهده نگردید. در مجموع قرار گرفتن طولانی مدت در معرض دوزهای تحت کشنده سم آندوسولفان سبب ایجاد تغییرات بیوشیمیایی در خون ماهی زبرای گورخری می گردد. لذا سنجش فاکتورهای بیوشیمیایی می تواند به عنوان ابزار ساده و مناسبی جهت ارزیابی تاثیر سموم بر ماهی ها پیشنهاد شود.
http://www.aejournal.ir/article_134048_d8d7380ccfea4d91b8fabf6825441408.pdf
2021-04-21
363
370
10.22034/aej.2021.134048
اندوسولفان
فاکتورهای بیوشیمیایی
ماهی زبرا
فاطمه
کیاپور
f.kiapour@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
علی
شعبانی
ali_shabany@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
رقیه
صفری
fisheriessafari@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
اسماعیلی ساری، ع.، 1381. آلاینده ها، بهداشت و استاندارد در محیط زیست. انتشارات نقشمهر. 769 صفحه.
1
بنایی، م.؛ میرواقفی، ع.؛ سورداگومیل، آ.؛ رفیعی، غ.ر. و احمدی، ک.، 1391. مطالعه تغییرات فاکتورهای بیوشیمیایی خون و آسیب شناسی بافتی کبد ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhyncus myksis) در تماس با غلظت های زیر کشنده دیازینون. نشریه محیط زیست طبیعی، مجله منابع طبیعی ایران. سال 65، شماره 3، صفحات 297 تا 313.
2
پورغلام، ر.؛ سلطانی، م.؛ حاج محی الدیت داوود، ح.؛ پورغلام، ح.؛ غرقی، ا. و نهاوندی، ر.، 1385. تعیین میانه غلظت کشنده (LC50) سم دیازینون و اثرات غلظت تحت کشنده آن بر روی برخی از شاخص های خونی و بیوشیمیایی ماهی کپور علف خوار (Ctenopharyngodon idella). مجله علوم شیلاتی ایران. سال 5، شماره 2، صفحات 67 تا 82.
3
جادی، ی.؛ موحدی نیا، ع.؛ صفاهیه، ع.؛ دژندیان، س. و حلاجیان، ع.، 1392. مطالعه اثرات تحت کشندگی آفت کش دیازینون بر برخی پارامترهای بیوشیمیایی سرم خون بچه ماهی سیم دریایی خزر. مجله پژوهش های جانوری (مجله زیست شناسی ایران). سال 28، شماره 3، صفحات 274 تا 281.
4
جمال زاده، ح.؛ کیوان، ا.؛ عریان، ش. و قمی مرزدشتی، م.ر.، 1387. بررسی سطوح برخی از شاخص های خونی و بیوشیمیایی ماهیان آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspiuse). مجله علمی شیلات ایران. سال 17، شماره 1، صفحات 47 تا 54.
5
حنایی کاشانی، ز.؛ ایمانپور، م.ر.؛ زادمجید، و. و مازندرانی، م.، 1395. تعیین درجه سمیت و تاثیر سم دیازینون بر شاخص های بیوشیمیایی خون مولدین نر ماهی قرمز (Carassiusauratus). فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان. سال 5، شماره 1، صفحات 59 تا 68.
6
خضرائی نیا، پ.؛ پیغان، ر. و آذریتاکامی، ق.، 1379. بررسی تغییرات برخی آنزیم های سرمی، اوره و کلسترول خون ماهی کپور معمولی در مسمومیت تجربی حاد با آمونیاک. مجله دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران. سال 55، شماره 3، صفحات 29 تا 32.
7
ستاری، م.؛ شاهسونی، د.؛ شعبانی پور، ن. و شفیعی، ش.، 1391. ماهی شناسی (تشریح و فیزیولوژی). انتشارات حق شناس. 226 صفحه.
8
سلطانی، م. و خوشباور رستمی، ح.، 1381. مطالعه اثر دیازینون بر برخی شاخص های خونی و بیوشمیایی چالباش (Acipenser guldunstadi). مجله علوم و فنون دریایی ایران. سال 1، شماره 4، صفحات 65 تا 70.
9
شاهسونی، د.؛ مهرداد، م. و مازندرانی، م.، 1385. تعیین مقادیر برخی از الکترولیت های سرم خون ماهی خاویاری قره برون (Acipenser persicus). مجله دامپزشکی ایران دانشگاه شهید چمران اهواز. سال 2، شماره 2، صفحات 112 تا 117.
10
شاهسونی، د.؛ وثوقی، غ. و خضرائی نیا، پ.و.، 1377. تعیین برخی فاکتورهای خونی ماهی اوزون برون در سواحل جنوب شرقی دریایی خزر. پژوهش و سازندگی. شماره 44، صفحات 126 تا 130.
11
قوتی، ن.؛ محمدی، س. و محمدی، و.، 1390. مقایسه و بررسی تغییرات سختی و قلیائیت با مسمومیت فلز سنگین روی در ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله تالاب، دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 2، شماره 8، صفحات 21 تا 28.
12
کاظمی، ر.؛ پوردهقانی، م.؛ یوسفی جوردهی، ا.؛ یارمحمدی، م. و نصری تجن، م.، 1389. فیزیولوژی دستگاه گردش خون آبزیان و فنون کاربردی خون شناسی ماهیان.انتشارات بازرگان رشت.194صفحه.
13
کیاپور، ف.، 1397. اثرات مواجهه با دوزهای تحت کشنده سم آندوسولفان بر بیان ژن آنزیم های آنتی اکسیدانی (کاتالاز و سوپر اکسید دیسموتاز) در ماهی گورخری (Danio rerio). پایان نامه کارشناسی ارشد، رشته تکثیر و پرورش آبزیان، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 49 صفحه.
14
Agrahari, S.; Pandey, K.C. and Gopal, K., 2007. Biochemical alteration induced by monocrotophos in the blood plasma of fish, Channa punctatus (Bloch). Pesticide Biochemistry and Physiology. Vol. 88, pp: 268-272.
15
Akhtar, M.S.; Pal, A.K.; Sahu, N.P.; Alexander, C. and Gupta, S.K., 2012. Effect of dietary pyridoxine on growth and biochemical responses of Labeo rohito fingerlings exposed to endosulfan. Pesticide Biochemistry and physiology. Vol. 103, pp: 23-30.
16
Bacankas, L.R.; Whitaker, J. and Giulio, R.T.D., 2004. Oxidative stress in two populations of killifish (Fundalus fundalus) with differing contaminant exposure histories. Marine Environment Research. Vol. 56, pp: 2- 5.
17
Bagheri, F., 2007.Study of pesticide residues (Diazinon, Azinphosmethyl) in the rivers of Golestan province (GorganRoud and Gharehsou), M.Sc. Thesis, Tehran University of Medical Science. Tehran, Iran. (In Persian).
18
Bajpayee, M.; Pandey, A.K.; Zaidi, S.; Musarrat, J.; Parmar, D.; Mathur, N.; Seth, P.K. and Dhawan, A., 2006. DNA damage and mutagenicity induced by endosulfan and its metabolites. Environmental and Molecular Mutagenesis. Vol. 47, No. 9, pp: 682-692.
19
Banaee, M., 2010. InOuence of silymarin in decline of sub-lethal diazinon-induced oxidative stress in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Ph.D. Thesis, Aquaculture and Environmental Department, Natural.
20
Banaee, M.; Mirvaghefei, A.R.; Rafiee, G.R.; Mojazi Amiri, B., 2008. Effect of sublethal diazinon concentrations on blood plasma biochemistry. International Journal of Environmenalt Research. Vol. 2, No. 2, pp: 189-198.
21
Banaee, M.; Sureda, A.; Mirvagefei, R. and Ahmadi. K., 2011. Effect of diazinon on biochemical parameters of blood in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Pesticide Biochemistry and Physiology. Vol. 99, pp: 1-6.
22
Barcellos, L.J.G.; Marquze, A.; Trapp, M.; Quevedo, R.Z.M. and Ferreia, D., 2010. The effects of fasting on cortisol, blood glucose and liver and muscle glycogen in adult jundia Rhamdia. quelen. Aquaculture. Vol. 300, pp: 231- 236.
23
Bhattacharya, H.; Xiao, Q.; Lun, L., 2008. Toxicity studies of nonylphenol on rosy barb (Puntius conchonious): A Biochemical and Histopathological Evaluation. Tissue and Cell. Vol. 40, pp: 243-249.
24
Borges, A.; Scotti, L.V.; Siqueira D.R.; JurinitzD.F. and Wassermann, G.F., 2004. Hematologic and serum biochemical values for jundia (Rhamdia quelen). Fish Physiology and Biochemical. Vol. 30, pp: 21- 25.
25
Crupkin, A.C.; Caaiquiriborde, P.; Mendieta, J.; Panzeri, A.M.; Ballesteros, M. and Menone M., 2013. Oxidative stress and genotoxicity in the South American cichlid, Australoheros facetus, after short-term sublethal exposure to endosulfan. Pesticide Biochemistry and Physiology. Vol. 105, pp: 102-110.
26
Das, B.K. and Mukherjee, S.C., 2003. Toxicity of cypermethrin in Labeo rohita fingerlings: biochemical, enzymatic and haematological consequences. Comparative Biochemistry Physiology. Part (C). Toxicology Pharmacology. Vol. 134, pp: 109-121.
27
Doumas, B.T.; Watson, W.A. and Biggs,H.G., 1977. Albumin standards and the measurement of serum albumin with bromcresol green. Clinica Chimica Acta. Vol. 258, pp: 21-30.
28
El-Sayed, Y.S. and Saad, T.T., 2008. Sub-acute intoxication of a deltamethrin-based preparation (Butox 5%EC) in monosex Nile tilapia, Oreochromis niloticus L. Basic & Clinical Pharmacology & Toxicology. Vol. 102, pp: 293-299.
29
Ezemonye, L. and Ikpesu, T., 2011. Evaluation of sub-lethal effects of endosulfan on cortisol secretion glutathione S-transferase and acetylcholinesterase activities in Clarias gariepinus. Food and Chemical Toxicology. Vol. 49, No. 9, pp: 1898-1903.
30
Haschek, W.M.; Walling, M.A. and Rousseax, C., 2010. Fundamental of Toxicological pathology. NewYork, NY: Academic Press. pp: 211-686.
31
Hoseinifar, S.H.; Mirvaghefi, A.; MojaziAmiri, B.; Merrifield, D. and DarvishBastami, K., 2010. The study of some haematologic and serum biochemical parameters of juvenile beluga fed dietary prebiotic oligofructose. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 31, pp: 91-96.
32
Hrubec, T.C. and Smith, S.A., 1999. Differences between plasma and serum sample for the evaluation of blood chemistry value in Rainbow trout, Channel catfish, Hybrid tilapia, and hybrid striped bass. Journal of Aquatic Animal Health. Vol. 11, pp: 116-122.
33
Hrubec, T.C.; Cardinale, J.L. and Smith, S.A., 2000. Hematology and plasma chemistry reference intervals for cultured Tilapia (Oreochromis hybrid). Verterinary Clinical Pathology. Vol. 29, No. 1, pp: 7-12.
34
Iwama, G.K.; Takemura, A. and Takano, K., 1999. Oxygen consumption rates of tilapiain fresh water, sea water, and hypersaline sea water. Jouranl of Fish Biology. Vol. 51, pp: 886-894.
35
Jee, J.H.; Masroor, F. and Kang, J.C., 2005. Responses of cypermethrin‐induced stress in haematological parameters of Korean rockfish, Sebastes schlegeli. Aquaculture Research. Vol. 36, No. 9, pp: 898-905.
36
John, P.J., 2007. Alteration of certain blood parameters of freshwater teleost Mystus vittatus after chronic exposure to Metasystox and Sevin. Fish Physiology Biochemistry. Vol. 33, pp: 15-20.
37
Joseph, B. and Raj, S.J., 2011. Impact of pesticide toxicity on selected biomarkers in fishes. International Journal of Zeological Research. Vol. 7, No. 2, pp: 212-220.
38
Kim, S.G.; Park, D.K.; Jange, S.W.; Lee, J.S.; Kim, S.S. and Chung, M.H., 2008. Effects of dietary benzo[a]pyrene on growth and hematological parameters in juvenile rockfish (Sabates schlegeli). Bulltin of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 81, pp: 470-474.
39
Knowles, S.; Hrubec, T.C.; Smith, S.A. and Bakal, R.S., 2006. Hematology and plasma chemistry reference intervals for cultured shortnose sturgeon (Acipenser brevirostrum). Veterinary Clinical Pathology. Vol. 35, pp: 434-440.
40
Koaud, H.A.; Zaki, M.M.; EI-Dahshan, A.R.; Saeid, S.H. and EL-Zorba, H.Y., 2011. Amelioration the toxic effects of cadmium exposure in Nile Tilapia (Oreochromis niloticus) by using (Lemna gibba). Vol. 8, No. 1, pp: 185-195.
41
Kumar, S.; Sahu, N.P.; Pal, A.K.; Choudhury, D.; Yengkokpam, S. and Mukherjee, S.C., 2005. Effect of dietary carbohydrate on haematology, respiratory burst activity and histological changes in (Labeo rohita) juveniles. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 19, pp: 331-344.
42
Lucas,A.,1996. Physical concepts of bioenergetics. Bioenergetics of aquatic animals. English edition, Taylor and Francis, France.
43
Luskova, V., 1995. Determination of normal values in fish. Acta Universitatis carolinae Biologica. Vol. 39, pp: 191- 200.
44
Mc Donald, D.G. and Milligan, C.L., 1992. 2 Chemical Properties of the Blood. Fish physiology. Vol. 12, pp: 55-133.
45
Murray, R.K.; Granner, D.K.; Mayes, P.A. and Rodwell, V.W., 2003. Harper’s Illustrated Biochemistry, Twenty-Sixth Edition; Lange Medical Books/McGraw-Hill (Medical Publishing Division). New York. 402 p.
46
Negro, C.L., 2015. Histopathological effects of endusolfan to hepatopancreas, gills and ovary of the fresh water crab (Zilchiopsis collastinensis). Ecotoxicology and Environmental Saftey. Vol. 113, pp: 87-94.
47
Nordlie, F.G., 2009. Environtal influences on regulation of blood/ plasma component in teleost fishes. Rev Fish Biol Fisheries. Vol. 19, pp: 481-564.
48
Nouri, J.; Arjmandi, R. and Bayat, H., 2000. Ecological investigation of application of pesticides in rice fields. Iran Journal Public Health. Vol. 29, No. 4, pp: 137–146.
49
Palanivelu, V.; Vijayavel, K.; Ezhilarasibalasubram anian, S. and Balasubramanian, M.P., 2005. Influence of insecticidal derivative (Cartap Hydrochloride) from the marine polychaete on certain enzyme systems of the freshwater fish Oreochromis mossambicus. Journal of Environmental Biology. Vol. 26, pp: 191-196.
50
Petrovic, S.; Ozretic, B. and Krajnovic-Ozretic, M., 1996. Cytosolic aspartate aminotransferase from grey mullet (Mugil auratus Risso) red muscle: Isolation and properties. The International Journal of Biochemistry & Cell Biology. Vol. 28, No. 2, pp: 873-881.
51
Rao, J.V., 2006. Toxic effects of novel organophosphorus insecticide (RPR-V) on certain biochemical parameters of euryhaline fish, Oreochromis mossambicus. Pesticide Biochemistry and Physiology. Vol. 86, pp: 78-84.
52
Reitman, S. and Frankel, A.S., 1957. A colorimetric method for the determination of serum glutatmic oxalacetic and glutamic pyruvic transaminases. American Journal of Clinical Pathology. Vol. 28, pp: 56-63.
53
Saera-Vila, A.; Calduch-Giner, j.; Prunet, P. and Perez-Sanchez, J., 2009. Dynamic of liver GH/IGF axis and selected stress markers in juvenile gilhead sea bream (Sparus aurata) exposed to acuted confinement differntial stress response of growth hormone receptors. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 154, pp: 197-203.
54
Saha, S. and Kaviraj, A., 2009. Effects of cypermethrin on some biochemical parameters and its amelioration through dietary supplementation of ascorbic acid in freshwater catfish Heteropneustes. Chemosphere. Vol. 74, pp: 1254-1259.
55
Sassi, A.; Darias, M.J.; Said, K.; Messaoudi, I. and Gisbert, E., 2013. Cadmium exposure affects the expression of genes involved in skeletogenesis and stress response in gilthead sea bream larvae. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 39, No. 3, pp: 649-659.
56
Silva-Barni M.F.; Gonzales, M. and Miglioranza, K.S.B., 2014. Assessment of persistent organic pollutants accumulation and lipid peroxidation in two reproductive stages of wild silverside (Odontesthes bonariensis). Ecotoxicolal Environmental Healthy. Vol. 99, pp: 43-45.
57
Srivastava, A.S.; Oohara, I.; Suzuki, T.; Shenouda, S.; Singh, S.N.; Chauhan, D.P. and Carrier, E., 2004. Purification and properties of cytosolic alanine aminotransferase from the liver of two freshwater fish (Clarias batrachus) and (Labeo rohita). Comparative Biochemistry and Physiology. Part B: Biochemistry and Molecular Biology. Vol. 137, pp: 197-207.
58
Swain, P.; Dash, S.; Sahoo, P.K.; Routray, P.; Sahoo, S.K.; Gupta, S.D.; Meher, P.K. and Sarangi, N., 2007. Nonspecific immune parameters of brood Indian major carp Labeo rohita and their seasonal variations. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 22, pp: 38-43.
59
Tellez-Bañuelos, M.C.; Santerre, A.; Casas-Solis, J., Bravo-Cuellar, A. and Zaitseva G., 2009. Oxidative stress in macrophages from spleen of Nile tilapia (Oreochromis niloticus) exposed to sublethal concentration of endosulfan. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 27, No. 2, pp: 105-111.
60
Tietz, N.W., 1986. Textbook of clinical chemistry. WB Saunders, London.
61
Van der, R.O.; Jonny, B. and Vermeulen, N.P.E., 2003. Fish bioaccumulation and biomarkers in environmental risk assessment, a review. Environmental Toxicology and Pharmacology. Vol. 13, pp: 57-149.
62
Velisek, J.; Dobsikova, R.; Svobodova, Z.; Modra, H. and Luskova, V., 2006. Effect of deltamethrin on the biochemical profile of common carp. Bulletin Environmental Contamination Toxicology. Vol. 76, pp: 992-998.
63
Waisberg, M.; Joseph, P.; Hale, B. and Beyersmam, D., 2003. Molecular and cellular mechanisms of cadmium. Toxicology. Vol. 192, pp: 95-117.
64
Wedemeyer, G.A.; Barton, B.A. and Mcleay, D.J., 1990. Stress and acclimation. In: Methods for Fish Biology. Schreck, C.B. and Moyle, P.B., (ed). Bethesda, Maryland. USA. pp: 451-490.
65
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی زیست شناسی تولیدمثل ماهی حلوا سفیدPampus argenteus (Euphrasen1788) در آب های شمال خلیج فارس و دریای عمان (استان هرمزگان)
این مطالعه با هدف تعیین خصوصیات زیستی و تولید مثل ماهی حلوا سفید، Pampus argenteus (Euphrasen, 1788)، در آب های استان هرمزگان (محدوده جزیره قشم) صورت پذیرفت. تعداد 955 نمونه ماهی صید شده با استفاده از تورهای ترال، گوشگیر و ابزار صید مشتا به مدت 12 ماه (از فرودین تا اسفند سال 1397) مورد توزین و زیست سنجی قرار گرفت. هم چنین تعاد 565 نموه نیز به منظور انجام مطالعات تولید مثلی به آزمایشگاه انتقال یافت. بیش ترین میانگین طول چنگالی و وزن بدن برای جنس های نر و ماده، به ترتیب 18/08 سانتی متر و 263/70 گرم در اردیبهشت ماه و و 22/77 سانتی متر و 488/09 گرم در مرداد ماه محاسبه گردید. نتایج حاصل از آزمون کولموگراف اسمیرنف دو نمونه ای نشان داد که توزیع فراوانی طولی ماهیان ماده بین دو فصل زمستان و بهار و دارای اختلاف معنی داری نبود، در حالی که برای ماهیان نر توزیع فراوانی طولی در بین تمامی فصول اختلاف معنی داری داشت. نسبت جنسی نر به ماده در طول یک سال نمونه برداری (1/49)، دارای اختلاف معنی داری بود (0/05>p ). با استفاده از روش باتاچاریا، برای جنس نر و ماده 4 گروه همزاد تشخیص داده شد. طول در اولین بلوغ جنسی (Lm50) برای حلوا سفید نر و ماده، به ترتیب برابر 18/12 سانتی متر و 21/72 سانتی متر محاسبه شدند. نتایج این مطالعه نشان داد که فعالیت تولید مثلی این گونه از فروردین ماه تا مرداد ماه در بیش ترین حد است. با توجه به نتایج این مطالعه پیشنهاد می گردد جهت حفاظت از ذخایر این گونه از فعالیت ماهیگیری در این ماه ها به صورت شدیدتری جلوگیری شود.
http://www.aejournal.ir/article_134072_a017c8c2fca702f45330993abcbe245f.pdf
2021-04-21
371
380
10.22034/aej.2021.134072
حلوا سفید
بیولوژی تولیدمثل
گروه همزاد
بلوغ جنسی
استان هرمزگان
علی
نکورو
alinekuroo@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
احسان
کامرانی
ezas47@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
محسن
صفائی
msn_safaie@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
هادی
رییسی
raeisi_hadi@yahhoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
AUTHOR
محمد
مومنی
msmk63@yahoo.com
5
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی (AREO)، بندرعباس، ایران
AUTHOR
دلیری، م.؛ کامرانی، ا. و پیغمبری، ی.، 1395. بررسی صید غیرمجاز ماهی حلواسفید Pampus argenteus با استفاده از تورهای گوشگیر ثابت در آب های ساحلی جزیره قشم. مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 6، شماره 3، صفحات 22 تا 32.
1
مؤمنی، م. و کامرانی، ا.، 1385. بررسی تولیدمثل ماهی حلوا سفید در صیدگاه های بندرعباس. مجله علوم و فنون دریایی ایران. دوره 5، شماره های 4-3، صفحات 53 تا 64.
2
Abdurahiman, K.P.; Zacharia, P.U.; Nayak, T.H. and Mohamed, K.S., 2006. Diet and trophic ecology of silver pomfret, Pampus argenteus (Euphrasen, 1788) exploited from the Southeast Arabian Sea. Journal of marine biology. Vol. 48, No. 2, pp: 206 -212.
3
Abu-Hakima, R.; Al-Abdol-Elah, K.M.; El-Zahr, C. and Akatsu, S., 1983. The reproductive biology of Pampus argenteus (Family Stromatidae) in Kuwaiti waters. KISR, Technical Report, Kuwait. pp: 1-20.
4
AL-Husaini, M.,2006. Fishery of shared stock of Silver Pomfret (Pampus argenteus) in the northern Persian Gulf; A case study. Aquaculthure & Fisheries Department. Kuwait Institute for Scientific Research. FAO. 17 p.
5
Al-hussaini, M., 2003. Fishery of shared stock of the Pomfret (Pampus argenteus) in the Northern Gulf. FAO Fisheries Department. No. 658, FAO, Rome.
6
Ali, T.S.; Mahamed, R.M. and Hussain, N.A., 2000. Growth, mortality and stock assessement of Silver Pomfret (Pampus argenteus) in north western Arabian Gulf, IRAQ. Marina Mesopotamica. Vol. 15, No. 2, pp: 373-378.
7
Almatar, S.M.; Lone, K.P.; Abu-Rezq, T.S. and Yusef, A.A., 2004. Spawning frequency, fecundity, egg weight and spawning type of Silver Pomfret, Pampus argenteus (Euphrasen) (Stromateidae), in Kuwait waters. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 20, No. 3, pp: 176-188.
8
Biswas, S.P., 1993. Manual of method in Fish Biology. South Asian Publisher. PVT. LTD. New Dehli international Book CO. Absecon High lands. NI. 157 p.
9
Boopendranath, M.R.; Pravin, P.; Remesan, M.P., Saly, T. and Edwin, L., 2012. Trawl Codend Selectivity in respect of Silver Pomfret, Pampus argenteus (Euphrasen, 1788). Fishery Technology. Vol. 49, No. 2, pp: 14-17.
10
Dadzie, S.; Abu-Seedo, F. and Al-Shalal, T., 1998. The onest of spawning in the Silver Pomfret in Kuwait waters and its implications for management. Fisheries Management and Ecology. Vol. 5, No. 6, pp: 501-510.
11
Dadzie, S., Abu-Seedo, F. and Al-Shalal., 2000. Reproductive biology of the Silver Pomfret, Pampus argenteus (Euphrasen, 1978) in Kuwait waters. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 16, No. 6, pp: 247-253.
12
Dersio, R.B., 1980. Harvestin strategies and parameter estimation for an agestructure model. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Science. Vol. 37, No. 2, pp: 268-282.
13
Esmaeili, A., 2006. Technical efficiency analysis for the Iranian fishery in the Persian Gulf. ICES Journal of Marine Science. Vol. 63, No. 9, pp: 1759-1764.
14
FAO. 2014. The State of World Fisheries and Aquaculture. Rome, Italy. 243 p.
15
Gayanilo, F.C. and Pauly, D., 1997. Computed information series fisheries, FAO-ICLARM stock assessment tools. Reference manual. Rome Italy. 262 p.
16
Gopalan, U.K., 1969. Studied on maturity and spawning of Silver pomfret (Pampus argenteus) in the Arabian Sea. Bull. The National Institute of Sciences of India, now the Indian National Science Academy. Vol. 38, pp: 785-796.
17
Haedrich, R.L., 1984. Stromatidae. In: FAO Species Identification Sheets for Fishery Purposes, Fischer, w. and Bianchi, G. Western Indian ocean, Fishing Area 51. Vol. 4. FAO, Rome.
18
Hashemi, S.A.R.; Safikhani, H. and vahabnejad, A., 2012. Growth, Mortality Parameters and Exploitation Rate of Silver Pomfret (Pampus argenteus Euphrasen, 1788) in Northwest of Persian Gulf (Khuzestan Coastal Waters, Iran. American Eurasian Journal Agriculture & Environmental Science. Vol. 12, No. 8, pp: 1095-1101.
19
Hussain, N.A. and Abdullah, M.A.S., 1977. The length weight relationship, spawning season and food habits of six commercial fishes in Kuwaiti waters. Indian Journal of Fisheries, Vol. 24, pp: 181-194.
20
Jones, R.E., Petrell, R.J., Pauly, D., 1999. Using modified Length-weight realationships to assess the condition of fish. Aquacultural Engineering, vol. 2, pp: 261-276.
21
King, M., 1995. Fisheries biology assessment and management fishing News book. 340 p.
22
King, M., 2007. Fisheries biology, assessment and management. Wiley-Blackwell, 2 editions. 400 p.
23
Lone, K.P.; Al-Ablani, S. and Almarar, S., 2008. Oogenesis, histological gonadal cycle, seasonal variations and spawning season of female Silver Pomfret (Pampus argenteus) from the spawning grounds of Kuwait. Pakistan Journal of Zoology. Vol. 40, No. 6, pp: 397-407.
24
Mohamed, A.M.; Resean, A.K. and Hashim, A.A., 2008. The stock assessment of Silver pomfret, Pampus argenteus (Euphrasen, 1788) in Iraq marine waters during the period 2004-2005. Department of Fisheries & Marine Resources, Agriculture College, Basrah University, Iraq Journal of agriculture science. 21 p.
25
Morgan, G.R., 1985. Stock assessment of pomfret (Pampus argenteus) in Kuwaiti waters. International Council for the Exploration of the Sea (ICES). Vol. 42, No. 1, pp: 3-10.
26
Nasir, N.AN., 2016. Distribution of Silver pomfret, Pampus argenteus in Iraqi marine water. Mesopotamia environmental journal. Vol. 2, No. 4, pp: 67-77.
27
Nikolsky, G.V., 1969. Theory of fish population dynamics as the biological background for rational exploitation and management of fishery resources, Oliver's Boyd Edinburgh. 323 p.
28
Parsamanesh, A., 2001. A comparison of Pampus argenteus stock parameters in east and west Asia. Indian Journal of Fisheries. Vol. 48, No. 1, pp: 63-70.
29
Pati, S., 1981. Fecundity of Silver Pomfret, Pampus argenteus (Euphrasen), from Bay of Bengal. Indian Journal of Marine Sciences. Vol. 10, No. 1, pp: 103-104.
30
Pati, S., 1982. Studies on the maturation, spawning and migration of Silver pomfret from Bay of Bengal, Matsaya. Indian Journal of Fisheries. Vol. 8, pp: 12-22.
31
Pauly, D., 1983. Some simple methods for the assessment of tropical fish stocks. FAO Fish. Tech. pap. 234, Rome. 52 p.
32
Pauly, D., 1980. On the inter relationships between natural mortality, growth parameters and mean environmental temperature in 175 fish stocks. International Council for the Exploration of the Sea (ICES). Vol. 39, No. 2, pp: 175-192.
33
Peng, Sh.; Shi, Z.; Yin, F.; Sun, P. and Wang, J., 2012. Selection of diet for culuture of juvenile Silver Pomfret, Pampus argenteus, East China Sea. Chines Journal of Oceanology and Limnology. Vol. 30, No. 2, pp: 231-236.
34
Sparre, P. and Venema, S.C., 1998. Introduction to tropical fish stock assessment. Part 1. Manual FAO Fish, Tech. Pap. 306. FAO, Rome, Italy. 407 P.
35
Subhadeep Ghosh, Sh.; Mohanraj, P.K.; Asokan, H.K.; Dhokia, M.S. and Bhint, H.M., 2009. Fishery and stock estimates of the Silver Pomfret, Pampus argenteus landed by gill netters at Veraval. Indian J. Fish. Veraval Regional Centre of Central Marine Fisheries Research Institute, Matsya India. Vol. 56, No. 3, pp: 177-182.
36
ORIGINAL_ARTICLE
فراوانی طولی و ترکیب گونهای ماهیان غیرهدف صید شده تورهای مخروطی بالارو در بنادر صیادی بابلسر و امیرآباد
قطر حلقه متصل به تورهای تورهای قیفی بالارو در ابتدا 1/5 متر بود اما به تدریج قطر حلقه متصل افزایش یافته به طوری که امروزه حدود 4 متر می باشد. به نظر می رسد این افزایش قطر حلقه، باعث افزایش تعداد ماهیان غیرهدف در این روش صید شده است. این مطالعه با هدف بررسی فراوانی طولی و ترکیب گونه ای ماهیان غیر هدف صید شده تورهای مخروطی بالارو در اردیبهشت ماه سال 1397 در بنادر صیادی بابلسر و امیرآباد به وسیله چهار فروند شناور صیادی طی 33 بار تورریزی در عمق 50-40 متری انجام شد. پس از شناسایی گونه ماهیان صید شده، طول کل و وزن نمونه ها اندازه گیری شد. از تعداد کل 193 ماهیان صید شده بیش ترین و کم ترین درصد فروانی نسبی کل گونه شگ ماهی خزری 37/8 درصد و ماهی سه خاره با 4/7 درصد بود. درصد فراوانی نسبی سایر گونه های صید شده در بندر بابلسر و امیرآباد عبارتند از نی ماهی (Syngnathus abaster) 38/8 و 28 درصد، ماهی سه خاره (Gasterosteus aculeatus) 50 و صفر درصد، کفال ماهیان (Mugilidae) 11/11 و 18/2 درصد، شگ ماهی (Alosa caspia) صفر و 41/7 درصد، ماهی سفید (Rutilus kutum) صفر و 12 درصد بود. هم چنین یافته ها حاکی از آن است که میزان فراوانی ماهیان صید شده در بندر صیادی امیرآباد بیش تر از بندر صیادی بابلسر می باشد و به شدت به منطقه وابسته می باشد (p <0/01). نتایج حاکی از فشار بالای حاصل از تولید صید ضمنی روی گونه های غیرتجاری در بندر صیادی امیرآباد می باشد. بیش ترین فراوانی در بندر صیادی بابلسر و امیرآباد به ترتیب در کلاسه طولی 5/5-4/5 سانتی متر ماهی سه خاره و 16/5-15/5 سانتی متر نی ماهی می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_134089_27f1be6c2f7e3de00233c58cf54d8424.pdf
2021-04-21
381
386
10.22034/aej.2021.134089
تور مخروطی بالارو
صید ضمنی
ترکیب گونهای
دریای خزر
ماهیان صید غیرهدف
سمیه
نوده شریفی
snshfishery@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
سعید
گرگین
sgorgin@gau.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
سید یوسف
پیغمبری
sypaighambari@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
حسینعلی
خوشباور رستمی
hkr_rostami@yahoo.com
4
مرکز تحقیقات ذخایر آبزیان آب های داخلی ، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، گرگان، ایران
AUTHOR
منوچهر
بابانژاد
m.babanezhad@gu.ac.ir
5
گروه آمار، دانشکده علوم پایه، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران
AUTHOR
حسن
فضلی
hn_fazli@yahoo.com
6
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران
AUTHOR
امیری، ک.، 1397. مدل سازی عوامل محیطی تاثیرگذار بر میزان صید در واحد تلاش (CPUE) کیلکا ماهیان (Clupeonella sp.) در سواحل ایرانی دریای خزر. رساله دکتری تخصصی. دانشگاه گیلان، دانشکده علوم پایه.
1
بی همتا، م.ر. و زارع چاهوکی، م.ع.، 1390. اصول آمار در علوم منابع طبیعی. انتشارات دانشگاه تهران. 300 صفحه.
2
شفیعی ثابت، س. و امینیان فتیده، ب.، 1387. بررسی تناوبی گونه ای ماهیان صید شده (صید ضمنی) طی فعالیت های تجاری شناورهای صیادی کیلکاماهیان در حوضه صیادی بندر کیاشهر. اولین همایش های منطقه ای اکوسیستم های آبی داخلی ایران. 17 تا 18 آذر 1387. دانشگاه آزاد اسلامی واحد بوشهر.
3
فضلی، ح.؛ جانباز ع.ا.؛ پرافکنده، ف.؛ صیادرضوی، ب.؛ کر، د.؛ طالشیان، ح. و باقرزاده، ف.، 1386. مونیتورینگ (بیولوژی و صید) کیلکا ماهیان در مناطق صید تجاری سال 83-81. وزارت جهاد کشاورزی، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، موٌسسه تحقیقات شیلات ایران. 115 صفحه.
4
فضلی، ح. و روحی، ا.، 1381. تأثیر احتمالی ورود شانه دار روی ترکیب گونه ای، صید و ذخایر کیلکا ماهیان در حوزه جنوبی دریای خزر سال های 80-1376. مجله علمی شیلات ایران. دوره 11، شماره 1، صفحات 63 تا 72.
5
عشریه، م.، 1397. بررسی ساختار سنی، رشد و حداکثر محصول پایدار ماهی کیلکای معمولی (Clupeonella cultriventris) در سواحل جنوبی دریای خزر (استان مازندران). پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری.
6
مرادی نسب، ا.ع.؛ بابایی، ن.؛ پارسا، م.؛ رئیسی، ه.؛ دلیری، م.؛ رهنما، ب.؛ نکورو، ع. و وثاقی، م.ج.، 1394. ترکیب صید ضمنی تورهای قیفی کیلکا ماهیان (Clupeonella ) را در جنوب غربی دریای خزر (صیدگاه های بندر انزلی). سومین کنفرانس ماهی شناسی ایران، شیراز. 190 صفحه.
7
Alverson, D.L.; Freeberg, M.H.; Murawski, S.A. and pope, j.G., 1994.A global assessment of fisheries bycatch and discard. FAO fisheries paper technical. N: 339.FAO Rom Italy. pp: 48-87.
8
Dan Teknik, M.S.P.J.; Nurdin, S.; Mustapha, M.A.; Lihan, T. and Ghaffar, M.A., 2015. Determination of potential fishing grounds of Rastrelliger kanagurta using satellite remote sensing and GIS technique. SainsMalaysiana. Vol. 44, No. 2, pp: 225-232.
9
Sachoemar, S., 2012. Variability of sea surface chlorophyll-a, temperature and fish catch within Indonesian region revealed by satellite data. Marine Research in Indonesia. Vol. 37, No. 2, pp: 75-87.
10
Paighambari, S.Y. and Daliri, M., 2012. The bycatch composition of Shrimp Trawl Fisheries in Bushehr Coastal Waters. Journal of the Persian Gulf Marin science. Vol. 3, No. 7, pp: 27-36.
11
Bellido, J.M.; Begona Santos, M. and Pierse, G.J., 201l. Fishery discards and bycatch: solution for an ecosystem approach to Fiaheries management. Hdribiologia. Vol. 670, pp: 317-333.
12
Fishcer, W.G. and Bianchi, G., 1984. FAO species identification sheet for fishery purposes Western Indian Ocean, Fishing Area 51. FAO, Rome. Vol. 1, 2 and 4.
13
Gower J.F.R., 1972. A survey of the uses of remote sensing from aircraft and satellites in oceanography and hydrography. Pac. Mar. Sci. Rep. Inst. Ocean. Sciences, Sidney, British Columbia, Can. pp: 3-72.
14
Kennely, S.J., 2010. By-catch reduction in the words fisheries. Spering publisher. 288 p.
15
Mamedov, E.V., 2008. The biology and abundance of kilka along the coast of Azerbaijan, Caspian Sea. ICES. Journal of Marine Science. Vol. 63, pp: 1665-1673.
16
Marchesana, M.; Spotob, M.; Verginellab, L. and Ferrero, E.A., 2005. Behavioural effects of artificial light on fish species of commercial interest. Fisheries Research. Vol. 73, pp: 171-185.
17
Walmsly, S.A.; Leslie R.W. and Saner, W.H.H., 2007. Bycath and discarding in the south African demersal trawl. Fisheries Research. Vol. 86, pp: 15-30.
18
Tang, D.; Kawamura, H.; Lee, M.A. and Van Dien, T., 2003. Seasonal and spatial distribution of chlorophyll-a concentrations and water conditions in the Gulf of Tonkin, South China Sea. Remote Sensing of Environment. Vol. 85, No. 4, pp: 475-483.
19
Solanlki, H.U.; Dwivedi, R.M.; Nayak, S.R.; Jadeja, J.V.; Thakar, D.B.; Dave, H.B. and Patel, M.I., 2001. Application of Ocean Colour Monitor chlorophyll and AVHRR SST for fishery forecast: Preliminary validation results off Gujarat coast, northwest coast of India.
20
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه هیبریدهای وارداتی و داخلی کرم ابریشم
پژوهش حاضر به منظور مقایسه توان تولیدی شش هیبرید تجاری داخلی با چهارده هیبرید تجاری وارداتی در مرکز تحقیقات ابریشم کشور انجام گردید. در این بررسی 3 تکرار به میزان نیم گرم از هر جعبه تخم نوغان از ابتدای خروج تخم از سردخانه توزین در پاکت های مخصوص تفریخ قرار داده شد. این آزمایش در قالب طرح کاملا تصادفی انجام گرفت و دادهها تحت برنامه Graphpad Prism و Minitab تجزیه و تحلیل شدند. به منظور آنالیز تجزیه واریانس از روش ANOVA و برای مقایسه میانگین از روش آزمون Tukey استفاده گردید. بر طبق نتایج هیبریدهای 871*872 و 104*103 با حدود 98/5 درصد تفریخ در تخم ها بهترین هیبریدهای جمعیتی بودند (0/05>p ). وزن کل پیله استحصالی در هیبریدهای Q*B با 9/667 و L*OR و QA*BB با 663 گرم در گروه برتر قرار داشتند (0/05>p ). هم چنین نتایج نشان داد که اختلاف وزن متوسط قشر ابریشمی در هیبریدهای 872*871، 154*153، S*M و 103*104 در گروه، افزایش معنی داری را داشتند (0/05>p ). در مورد صفت تولید پیله به ازای ده هزار لارو هیبریدهای 154*153، 872*871وS*M، به ترتیب بهترین تولید پیله را دارا بودند (0/05>p ). در ویژگی تعداد پیله در لیتر هیبریدهای S*M و 872*871 با کم ترین تعداد پیله در یک لیتر به عنوان بهترین گروه در این صفت بودند. نتیجه گیری کلی از این تحقیق نشان می دهد که هیبریدهای داخلی در بسیاری از صفات اقتصادی مطرح در زمینه پرورش کرم ابریشم همسطح و یا بهتر از هیبریدهای وارداتی بوده و می توان از آن ها به عنوان جایگزین مناسبی در این صنعت در ایران استفاده نمود.
http://www.aejournal.ir/article_134160_2a7629cf6ecc2ed85907a7804ed6ddee.pdf
2021-04-21
387
396
10.22034/aej.2021.134160
ارزش اقتصادی
نوغانداری
هیبرید تجاری داخلی
هیبرید تجاری وارداتی
محمدرضا
بیابانی
silkroad2000ir@yahoo.com
1
مرکز تحقیقات ابریشم کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
علی
خضریان
a.khezrian18@gmail.com
2
مرکز تحقیقات ابریشم کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
یوسف
خیرخواه رحیم آباد
silkwayisrc@yahoo.com
3
مرکز تحقیقات ابریشم کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
فتح اله
شهبازی
am.khezrian@gmail.com
4
مرکز تحقیقات ابریشم کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
سیده خیرالنسا
طیب نعیمی
mnaimi60@yahoo.com
5
مرکز تحقیقات ابریشم کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
رضا
صورتی زنجانی
rezasourati@yahoo.com
6
مرکز تحقیقات ابریشم کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
بیژنگ
جلوه زیده سرائی
ali45467279@ymail.com
7
مرکز تحقیقات ابریشم کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
علیرضا
صیداوی
alirezaseidavi@yahoo.com
8
گروه علوم دامی، دانشکده علوم کشاورزی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
پورقاسمی
mohammad_poorghasemi@yahoo.com
9
گروه علوم دامی، دانشکده علوم کشاورزی، واحد رشت، دانشگاه آزاد اسلامی، رشت، ایران
AUTHOR
بیژن نیا، ع.ر.؛ صیداوی، ع.ر. و غنی پور، م.، 1387. ارزیابی تأثیر رژیم غذایی و زمان پرورش بر پارامترهای بیولوژیکی و اقتصادی کرم ابریشم. مجله اقتصاد و توسعه کشاورزی (علوم و صنایع کشاورزی). دوره 22، شماره 2، صفحات 1 تا 13.
1
صیداوی، ع.ر.؛ میرحسینی، س.ض.و غنی پور، م.، 1386. بررسی تأثیر انتخاب برخی صفات کمی پیله در سطوح گله لاین 3P و همبستگی آن با پارامترهای تولیدمثلی و مقاومت گله های هیبرید F1 کرم ابریشم نسبت به بیماری ها. مجله زیست شناسی ایران. دوره 20، شماره 3، صفحات 262 تا 268.
2
صیداوی، ع.ر.؛ میرحسینی، س.ض.؛ غنی پور، م. و بیژن نیا، ع.ر.،1387. بررسی عملکرد و مقاومت نسبی پانزده هیبرید کرم ابریشم ایران در شرایط طبیعی و آلوده به گراسری. مجله علوم کشاورزی ایران (مجله دانش گیاه پزشکی ایران). دوره 39، شماره 1، صفحات 15 تا 24.
3
میرحسینی، س.ض.؛ غلامی، م.ر.؛ صیداوی، ع.ر.؛ غنی پور، م.؛ بیژن نیا، ع.ر. و رکنی، ح.، 1387. عملکرد تلاقی های دو طرفه، سه طرفه و چهار طرفه کرم ابریشم (Lep.: Bombycidae) Bombyx mori ایران. پژوهش و سازندگی در امور دام. دوره 21، شماره 1، صفحات 47 تا 57.
4
میرحسینی، س.ض.؛ مواج پور، م.؛ غنی پور، م. و صیداوی، ع.ر.، 1394. تاثیر تنشهای محیطی در فصول مختلف و اثر فصل بر عملکرد واریته های مختلف کرم ابریشم Bombyx mori. فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری. دوره 7، شماره 1، صفحات 51 تا 61.
5
میرحسینی، س.ض.؛ نعمت الهیان، ش.؛ برزین، پ.؛ ناصرانی، م. و صیداوی، ع.ر.، 1392. اثر صفت مورد نظر در استفاده از روش شاخص انتخاب دو صفتی بر عملکرد دو لاین تجاری کرم ابریشم.فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری. دوره 5، شماره 3، صفحات 1 تا 8.
6
نعمت الهیان، ش.؛ طرفه، ع.؛ مواج پور، م.؛ حسینی مقدم، س.ح. و صیداوی، ع.ر.؛ 1395. بررسی توان تولید هیبریدهای مختلف کرم ابریشم داخلی و خارجی. فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری. دوره 8، شماره 1، صفحات 85 تا 94.
7
FAO. 2014. FAO Statistics. Available at: http://faostat.fao. org
8
Kumar, K.P. and Naik, S., 2011. Development of polyvoltine x bivoltine hybrids of mulberry silkworm, Bombyx mori L. tolerant to BmNPV. International Journal of Zoological Research. Vol. 7, pp: 300-309.
9
Mano, Y.; Nishimura, M.; Kato, M. and Nagayasu, K., 1988. Breeding of an autosexing silkworm race N140 × C145. Bulletin of Sericultural Experimental Station. Vol. 30, pp:753-785.
10
Mirhosseini, S.Z.; Ghanipoor, M.; Shadparvar, A. and Etebari, K., 2005. Selection indices for cocoon traits in six commercial silkworms (Bombyx mori) lines. Philippine Agricultural Scientist. Vol. 88, pp: 328-336.
11
Moorthy, S.M.; Das, S.K.; Kar, N.B. and Raje Urs, S., 2007. Breeding of bivoltine breeds of Bombyx mori suitable for variable climatic conditions of the tropics. International Journal of Industrial Entomology. Vol. 14, No. 2, pp: 99-105.
12
Ram, K.; Bali, R.K. and Koul, A., 2003. Seasonal evaluation of various cross combinations in bivoltine silkworm Bombyx mori.Skuast Journal of Research. Vol. 2, No. 2, pp:169-177.
13
Reddy, M.N.; Begum, A.N.; Shekar, K.B.C.; Kumar, S.N. and Qadri, S.M.H., 2012. Expresssion of hybrid vigour in different crossing pattern involving the bivoltine silkworm Bombyx mori L. parents. Indian Journal of Sericulture. Vol. 51, No. 2, pp: 26-31.
14
Satenahalli, S.B.; Govindan, R. and Goud, J.V., 1988. Variation in some polygenic traits of silkworm breeds and their F1 hybrids. Environment and Ecoligy. Vol. 6, No. 4, pp: 855-857.
15
Singh, N.; Tara J.S.; Tayal, M.K.; Kour, A.; Sudan, K.; Sharma, K.; Kumar, V.; Sharma, A. and Mahroof, A., 2016. Evaluation of different silkworm hybrids in jammu region. International Journal of Advanced. Vol. 4, No, 8, pp: 201-204.
16
Trivedi, S. and Sarkar, K., 2015. Comparative study on income generation through agriculture crop and sericulture at farmer’s level in Murshidabad district. Journal of Entomology and Zoology Studies. Vol. 3, No. 1, pp: 242-245.
17
Vaez Jalali, E.; Seidavi, A.R. and Lavvaf, A., 2011. Hybrid and hybridization as appropriate tool for silkworm production improvement: A review. Journal of Food Agriculture and Environment. Vol. 9, No. 3, pp: 992-997.
18
Weir, B.S.; Eisen, E.J.; Goodman, M.M. and Namkoong, G., 1988. Proceedings of 2nd International Conference on Quantitative Genetics. Sinaver Associates, Inc. USA. 724 p.
19
Zhao, Y.; Chen, K. and He, S., 2007. Key principles for breeding spring and autumn silkworm varieties: From our experience of breeding 873×874. Caspian Journal of Environmental Science. Vol. 5, No. 1, pp: 57-61.
20
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه حشرات شکارگر و پارازیتوئید در برخی مزارع پنبه ایران
پنبه یا طلای سفید (Gossypium spp., Malvaceae) یکی از محصولات مهم و با ارزشی است که در صنایع نساجی و تولید روغن های خوراکی کاربرد دارد. آفات متعدد و کلیدی در مزارع پنبه دنیا و از جمله ایران فعالیت دارند که در اغلب موارد خسارت قابل ملاحظه ای به این محصول وارد می کنند. بر این اساس، فون دشمنان طبیعی (شامل شکارگران و پارازیتوئیدها) فعال در مزارع پنبه بعضی مناطق کشور مورد بررسی قرار گرفت. در مجموع 43 گونه حشره شکارگر از راستههای Coleoptera (هشت گونه از خانواده Coccinellidae یا کفشدوزکها و پنج گونه از خانواده Carabidae)، Diptera (هفت گونه از خانواده Syrphidae)، Heteroptera (هفت گونه از خانواده Anthocoridae، سه گونه از خانواده Geocoridae، سه گونه از خانواده Nabidae و چهار گونه از خانواده Reduviidae)، Neuroptera (یک گونه از خانواده Chrysopidae و یک گونه از خانواده Hemerobiidae)، Mantodea (یک گونه از خانواده Empusidae و سه گونه از خانواده Mantidae) و نیز 37 گونه پارازیتوئید از دو راسته Diptera (سه گونه از خانواده Tachinidae) و Hymenoptera (پنج گونه از خانواده Aphelinidae، هفت گونه از خانواده Braconidae، دو گونه از خانواده Chalcididae، دو گونه از خانواده Eulophidae، دوازده گونه از خانواده Ichneumonidae، چهار گونه از خانواده Pteromalidae و دو گونه از خانواده Trichogrammatidae) جمع آوری و شناسایی گردیدند.
http://www.aejournal.ir/article_134377_98c728883d5723734e4842ad9eb7c466.pdf
2021-04-21
397
406
10.22034/aej.2021.134377
پنبه
فون
دشمنان طبیعی
تنوع گونهای
کنترل بیولوژیک
حمید
ساکنین
hchelav@gmail.com
1
گروه گیاهپزشکی، واحد قائمشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، قائمشهر، ایران
AUTHOR
حسن
قهاری
hghahari@yahoo.com
2
گروه گیاهپزشکی، واحد یادگار امام خمینی (ره)، دانشگاه آزاد اسلامی، شهرری، ایران
LEAD_AUTHOR
مجید
نوائیان
majid_navaian@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی، واحد یادگار امام خمینی (ره)، دانشگاه آزاد اسلامی، شهرری، ایران
AUTHOR
Barbosa, P., 1998. Conservation biological control. Academic Press, San Diego, California. 396 p.
1
Behdad, E., 1993. Pests of field crops in Iran. Neshat Publication, Isfahan. 618 p. [in Persian]
2
Beckag, N.E.; Thompson, S.N. and Federic, B.A., 1994. Parasitoids and pathogens of insects. Academic Press. Vol.
3
1- 2, pp: 294-364.
4
Bellows, T.S. and Fisher, T.W., 1999. Handbook of biological control. Academic Press, San Diego, CA. 1046 p.
5
DeBach, P. and Rosen, D., 1991. Biological control by natural enemies. Cambridge University Press. 440 p.
6
Ebrahimi, E., 1999. Morphological and enzymatic study of the genus Trichogramma in Iran. Ph. D. thesis of Entomology, Tarbiat Modarres University. [in Persian]
7
Ghahari, H., 2017. Species diversity of Ichneumonoidea (Hymenoptera) from rice fields of Mazandaran province, northern Iran. Journal of Animal Environment. Vol. 9, No. 3, pp: 371-378. [in Persian]
8
Ghahari, H., 2018. Species diversity of the parasitoids in rice fields of northern Iran, especially parasitoids of rice stem borer. Journal of Animal Environment. Vol. 9, No. 4, pp: 289-298. [in Persian]
9
Ghahari, H.; Hayat, R.; Chao, C. and Ostovan, H., 2008. A contribution to the dipteran parasitoids and predators in Iranian cotton fields and surrounding grasslands. Munis Entomology & Zoology. Vol. 3, No. 2, pp: 699-706.
10
Ghahari, H.; Gadallah, N.S.; Çetin Erdoğan, Ö.; Hedqvist, K.J.; Fischer, M.; Beyarslan, A. and Ostovan, H., 2009a. Faunistic note on the Braconidae (Hymenoptera: Ichneumonoidea) in Iranian cotton fields and surrounding grasslands. Egyptian Journal of Biological Pest Control. Vol. 19, pp: 115-118.
11
Ghahari, H.; Jedryczkowsky, W.B.; Aslan, M. and Ostovan, H., 2009b. Lady beetles (Coleoptera: Coccinellidae) of Iranian cotton fields and surrounding Grasslands. Journal of Biological Control. Vol. 23, No. 3, pp: 265-269.
12
Ghahari, H.; Kesdek, M.; Samin, N.; Ostovan, H.; Havaskary, M. and Imani, S., 2009c. Ground beetles (Coleoptera: Carabidae) of Iranian cotton fields and surrounding grasslands. Munis Entomology & Zoology. Vol. 4, No. 2, pp: 436-450.
13
Ghahari, H. and Jussila, R., 2010. A contribution to the knowledge of ichneumon wasps from Iranian cotton fields and surrounding grasslands. Zoosystematica Rossica. Vol. 19, No. 2, pp: 357-360.
14
Ghahari, H.; Cherot, F.; Moulet, P.; Carpintero, D.L.; Linnavuori, R.E.; Sakenin, H. and Ostovan, H., 2011a. Heteroptera (Insecta) fauna of Iranian cotton fields and surrounding grasslands. Entomologie faunistique. Vol. 64, pp: 3-13.
15
Ghahari, H.; Fischer, M.; Sakenin, H. and Imani, S., 2011b. A contribution to the Agathidinae, Alysinae, Aphidiinae, Braconinae, Microgastrinae and Opiinae (Hymenoptera: Braconidae) from cotton fields and surrounding grasslands of Iran. Linzer biologische Beiträge. Vol. 43, No 2, pp: 1269-1276.
16
Godfray, H.C.J., 1994. Parasitoid and behavioral ecology. Princeton University Press, New Jersey. 473 p.
17
Gurr, G. and Wratten, S.D., 2000. Biological control: Measures of success. Kluwer Academic Publishers, Boston, Massachusetts. 429 p.
18
Hassell, M.P., 1978. The dynamics of arthropod predator prey systems. Princeton University, Princeton, Newjeresy. 237 p.
19
Huffaker, C.B. and Messanger, P.S., 1978. Theory and practice of biological control. Academic Press, New York. 788 p.
20
Jabran, K. and Singh Chauhan, B., 2019. Cotton production. John Wiley & Sons Ltd. 432 p.
21
Jervis, M. and Kidd, N., 1996. Insect natural enemies: Practical approaches to their study and evaluation. Chapman and Hall, London. 491 p.
22
Khanjani, M., 2006. Field crop pests in Iran. Bu-Ali Sina University Publication. 719 p. [in Persian]
23
Kogan, M., 1998. Integrated pest management: historical perspectives and contemporary developments. Annual Review of Entomology. Vol. 43, pp: 243-270.
24
Maredia, K.M.; Dakouo, D. and Mota-Sanchez, D., 2003. Integrated pest management in the global arena. Cromwell Press, Trowbridge, UK. 512 p.
25
Matthews, G.A. and Tunstall, J.P., 1994. Insect pests of cotton. Wallingford, UK, CABI Publishing. 593 p.
26
Ramalho, F.S., 1994. Cotton pest management: part 4. A Brazilian prospective. Annual Review of Entomology. Vol. 39, pp: 563-578.
27
Samways, M.J., 1981. Biological control of pests and weeds. Edward Arnold Ltd., London. 440 p.
28
Upadhay, R.K.; Mukerj, K.G. and Rajak, R.L., 1997. IPM system in agriculture. Vol. 2. Biocontrol in emerging biotechnology. Aditya Books Pvt. Ltd., New Delhi. 620 p.
29
van den Bosch, R.D. and Messenger, P.S., 1973. Biological control. Intext Educational Publishers, 1973 - Technology & Engineering. 180 p.
30
van Driesche, R.G. and Bellows, T.S., 1996. Biological control. Chapman and Hall. 539 p.
31
Waage, J. and Greathead, D., 1986. Insect parasitoids. Academic Press. 389 p.
32
Zehr, U.B., 2010. Cotton - Biotechological advances. Vol. 65. Biotechnology in agriculture and forestry. Berlin, Heidelberg: Springer-Verlag. 245 p.
33
Ziaeian, A.; Seilsepour, M. and Ghooshchi, F., 2006. The principles of cotton nutrition. Marz-e Danesh Publication. 168 p. [in Persian]
34
ORIGINAL_ARTICLE
تغییرات جمعیت دو گونه تریپس از جنس Haplothrips (Thysanoptera: Phlaeothripidae) در مزارع برنج استان ایلام با شرایط اقلیمی متفاوت
هدف از این مطالعه بررسی تغییرات جمعیت دو گونه تریپس متعلق به جنس Haplothrips در مزارع برنج با دو اقلیم متفاوت بود. نمونه برداری ها در فصل زراعی 1397-1396 از مراحل مختلف رشد برنج در چهار مزرعه در شهرستان های چرداول (معتدل سردسیری) و دره شهر (معتدل گرمسیری) واقع در استان ایلام (غرب ایران) انجام شد. در مجموع هشت گونه تریپس متعلق به شش جنس و سه خانواده جمع آوری و شناسایی گردید؛ که در بین آن ها Haplothripsganglbaueri Schmutz و Haplothrips aculeatus (Fabricius) به ترتیب با فراوانی 73/16 و 17/83 درصد (در مزارع برنج دره شهر) و 61/19 و 27/25 درصد (در مزارع برنج چرداول) دارای بیش ترین جمعیت بودند. بر اساس نتایج به دست آمده، زمان ظهور هر دو گونه تریپس در هر دو منطقه سردسیر و گرمسیر از زمان به ساقه رفتن گیاه برنج بود. بیش ترین تراکم هر دو گونه H. ganglbaueri و H. aculeatus در مزارع برنج دره شهر، در مرحله بالغ به ترتیب با میانگین 0/8 و 0/33 تریپس مربوط مرحله پرشدن دانه و بیش ترین تراکم مرحله نابالغ و مجموع (بالغ و نابالغ) به ترتیب با تعداد (0/9 و 1/40) و (0/33 و 0/6) تریپس مربوط به مرحله گل دهی برنج بود. اما بیش ترین تراکم H. ganglbaueri در مزارع برنج چرداول در مرحله بالغ با تعداد 0/73 تریپس مربوط به مرحله گل دهی و بیش ترین تراکم مرحله نابالغ و مجموع (بالغ و نابالغ) با تعداد 0/93 و 1/40 تریپس مربوط به مرحله خوشه دهی برنج بود. هم چنین بیش ترین تراکم H. aculeatus در مزارع چرداول در مرحله بالغ و مجموع (بالغ و نابالغ) با تعداد 0/26 و 0/43 تریپس مربوط به مرحله پرشدن دانه و بیش ترین تراکم مرحله نابالغ تریپس با تعداد 0/23 تریپس مربوط به مرحله گل دهی برنج به دست آمد.نتایج آزمون T-test برای دو گونه هاپلوتریپس بین دو شهرستان دره شهر و چرداول نشان داد که بین این دو منطقه اختلاف معنی داری وجود نداشت. به طور کلی روند تغییرات جمعیت مراحل نابالغ تریپس در هر دو منطقه از ابتدای حضور در مزرعه پایین و سپس یک سیر صعودی نشان داد و در مرحله گل دهی برنج نیز روند کاهشی پیدا کرد. هم چنین حشرات بالغ تریپس در اوایل مرحله رشدی برنج مشاهده شدند، به طوری که تراکم حشرات بالغ در ابتدای فصل پایین بوده و سپس بعد از افزایش تدریجی، در مرحله پُر شدن دانه از تراکم تریپس کاسته شد.
http://www.aejournal.ir/article_134415_6a3ebccdbbc9fa840d0f33c1a4152a50.pdf
2021-04-21
407
414
10.22034/aej.2021.134415
برنج
Haplothrips
فراوانی
اقلیم
ایران
آذرنوش
عموزاده
azarnooshamoozadeh@yahoo.com
1
گروه گیاهپزشکی و شناسایی و مبارزه با علف های هرز، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
AUTHOR
مجید
میراب بالو
majid.mirab@gmail.com
2
گروه گیاهپزشکی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه ایلام، ایلام، ایران
LEAD_AUTHOR
علیرضا
نظری
a-nazari@iau-arak.ac.ir
3
گروه گیاهپزشکی و شناسایی و مبارزه با علف های هرز، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
AUTHOR
عباسی، م.؛ میرزایی، ج. و میراب بالو، م.، 1397. تغییرات جمعیت و تنوع زیستی موجودات خاکزی (هزارپایان) در جنگل های زاگرس (مطالعه موردی: شهرستان ایلام). فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری. سال 10، شماره 4، صفحات 429 تا 434.
1
Andjus, L., 2004. The thrips fauna on wheat and on plants of the spontaneous flora in the bordering belt surrounding it. Acta Phytopathologica et Entomologica Hungarica. Vol. 39, pp: 255-261.
2
Ane, N.U. and Hussain, M., 2016. Diversity of insect pests in major rice growing areas of the world. Journal of Entomology and Zoology Studies. Vol. 4, pp: 36-41.
3
Cavalleri, A.; Mendonça, Jr.M.D.S. and Rodrigues, E.N.L., 2010. Thrips species (Thysanoptera, Terebrantia) inhabiting irrigated rice and surrounding habitats in Cachoeirinha, state of Rio Grande do Sul, Brazil. Revista Brasileira de Entomologia. Vol. 54, pp: 501-504.
4
Chander, S., 1999. Thrips infestation in relation to panicle stage in rice. International Rice Research Notes. Vol. 24, pp: 25-26.
5
Dale, D., 1994. Insect pests of the rice plant their biology and ecology, pp: 363-485. In E. A. Heinrichs (ed.), Biology and management of rice insects. Wiley Eastern/ New Age International Limited, New Delhi, India.
6
Kasprzak, K. and Niedbała, W., 1981. Biocenotic indicators in quantitative research. In: Methods applied in soil zoology (Eds. Górny, M. and Grüm, L.,), pp: 397-416, PWN, Warszawa.
7
Kharbangar, M.; Choudhry, S. and Hajong, S., 2014. Occurrence and abundance of thrips (Thysanoptera) associated with rice crops from Meghalaya. International Journal of Research Studies in Biosciences. Vol. 2, pp: 1-7.
8
Kharbangar, M.; Hajong, S. and Choudhry, S., 2013. New records of thrips (Thysanoptera) species associated with rice in Khasi Hills, Meghalaya. Journal of Entomology and Zoology Studies. Vol. 1, pp: 100-104.
9
Lestari, A.P.; Abdullah, B.; Junaedi, A. and Aswidinnoor, H., 2016. Yield stability and adaptability of aromatic new plant type (NPT) rice lines. Journal Agronomi Indonesia (Indonesian Journal of Agronomy). Vol. 38, pp: 199-204.
10
Minaei, K. and Mound, L.A., 2008. The Thysanoptera Haplothripini (Phlaeothripidae) of Iran. Journal of Natural History. Vol. 4, pp: 2617-2658.
11
Mirab-balou, M., 2018. An updated checklist of Iranian thrips (Insecta: Thysanoptera). Far Eastern Entomologist. Vol. 361, pp: 12-36.
12
Mirab-balou, M. and Miri, B., 2018. Haplothrips aliakbarii sp. nov. (Thysanoptera: Phlaeothripidae): a new thrips on oak trees from Ilam Province (western Iran). Turkish Journal of Zoology. Vol. 42, pp: 608-613.
13
Mirab-balou, M. and Chen, X.X., 2010. A new method for preparing and mounting thrips for microscopic examination. Journal of Environmental Entomology. Vol. 32, pp: 115-121.
14
Mirab-balou, M. and Chen, X.X., 2011. Iranian Thripinae with ctenidia laterally on the abdominal tergites (Thysanoptera: Thripidae). Natura Montenegrina. Vol. 10, pp: 435-466.
15
Mound, L.A., 1997. Biological diversity. In: Lewis T, editor. Thrips as crop pests. Wallingford (UK): CAB International. pp: 197-215.
16
Mound, L.A. and Masumoto, M., 2005. The genus Thrips (Thysanoptera, Thripidae) in Australia, New Caledonia and New Zealand. Zootaxa. Vol. 1020, pp: 1-64.
17
Mound, L.A. and Masumoto, M., 2009. Australian Thripinae of the Anaphothrips genus-group (Thysanoptera), with three new genera and thirty-three new species. Zootaxa. Vol. 2042, pp: 1-76.
18
Nugaliyadde, L. and Heinrichs, E.A., 1984. Biology of rice thrips, Stenchaetothrips biformis (Bagnall) (Thysanoptera: Thripidae), and a greenhouse rearing technique. Journal of Economic Entomology. Vol. 77, pp: 1171-1175.
19
Pathak, M.D. and Khan, Z.R., 1994. Insect pests of rice. International Rice Research Institute, Manila, Philippines.
20
Persley, G.J., 1996. Biotechnology and integrated pest management. Cab International.
21
Priesner, H., 1964. Ordnung Thysanoptera (Fransenflugler, Thripse). In: Franz, H. Bestimmungsbucher zur Boden fauna Europas 2. Akademie-Verlag, Berlin. pp: 1-242.
22
Rajabian Miri, M.; Shayanmehr, M. and Mirab-balou, M., 2018. Population fluctuations of thrips (Thysanoptera) and their relationship to the phenology of rice in Babolsar city (Mazandaran Province, Iran). Journal of Insect Biodiversity and Systematics. Vol. 4, pp: 47-55.
23
Singh, B.B. and Singh, R., 2014. Major rice insect pests in Northeastern UP. International Journal of Life Sciences Biotechnology and Pharma Research. Vol. 1, pp: 124-143.
24
Southwood, T.R.E. and Henderson, P.A., 2000. Ecological methods. 592 pp. Blackwell Science, USA.
25
ThripsWiki., 2020. ThripsWiki - providing information on the World's thrips. Available from: http://thrips.info/wiki/ (Accessed 07 April 2020).
26
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی کارایی چند فرمولاسیون کنه کش فن پروپاترین در کنترل کنه قرمز اروپایی در باغ های سیب برخی از استان های کشور
کنه قرمز اروپایی (Koch) Panonychus ulmi از مهم ترین آفات درختان سیب در نقاط مختلف کشور است. این پروژه در باغ های سیب استان های اصفهان، آذربایجان شرقی، البرز و خراسان رضوی با 11 تیمار شامل: کنه کش فنپروپاترین با نام های تجاری پاتریگل، دانیتکس، رجاپاترین، فنپروتکس، مکتیول، ایکاروس، شیماترین و نام قدیمی دانیتول با غلظت 2 در هزار،کنه کش باروک با غلظت 0/4 در هزار، کنه کش انویدور با غلظت 0/5 در هزار و شاهد (آب پاشی) انجام شد. ارزیابی با شمارش تعداد کنه های زنده در سطح برگ یک روز قبل و 3، 7، 14، 21 و 28 روز بعد از سم پاشی صورت گرفت. درصد کارایی با فرمول هندرسون–تیلتون محاسبه گردید. تجزیه آماری توسط نرم افزار SAS در قالب تجزیه مرکب طرح بلوک های کامل تصادفی در چند مکان صورت گرفت. نام های تجاری با فرمولاسیون های جدید تاثیر مناسبی داشته اند و از روز سوم در کنترل کنه موثر بودند و بین 72 تا 98 درصد تلفات ایجاد کردند و روز هفتم کارایی آن تا 94 درصد رسید. تاثیر ضرب های و دوام این کنه کش ها حائز اهمیت است. در روز 28 ام بعد از سم پاشی کارایی این ترکیب تا 93 درصد نیز رسید. نام های تجاری رجاپاترین، ایکاروس، مکتیول، شیماترین، دانیتکس، پاتریگل و فنپروتکس کارایی مطلوبی در کنترل کنه قرمز اروپایی داشتند و در بین آن ها ایکاروس و پاتریگل تاثیر بیش تری نشان دادند، ایکاروس بین 74-98 درصد و مکتیول بین 55-98 درصد تلفات را نشان دادند. به کارگیری دوز مصرفی 2 در هزار کنه کش فنپروپاترین با نام های پاتریگل، دانیتکس، رجاپاترین، فنپروتکس، مکتیول، ایکاروس، شیماترین برای کنترل کنه قرمز اروپایی در باغات سیب توصیه می شود.
http://www.aejournal.ir/article_134457_71fdc70fe95b6ba03dd1e71c3444d677.pdf
2021-04-21
415
422
10.22034/aej.2021.134457
کنه کش
نام تجاری جدید
کارایی و روش هندرسون–تیلتون
مریم
رضائی
marezaie@ut.ac.ir
1
بخش تحقیقات جانورشناسی کشاورزی، موسسه تحقیقات گیاه پزشکی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
داود
شیردل
dshirdel@yahoo.com
2
بخش تحقیقات آفات و بیماری های گیاهی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان آذربایجان شرقی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تبریز، ایران
AUTHOR
هاشم
کمالی
hashemkamali@gmail.com
3
بخش تحقیقات آفات و بیماری های گیاهی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان خراسان رضوی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، مشهد، ایران
AUTHOR
محمدسعید
امامی
mse1480@gmail.com
4
بخش تحقیقات آفات و بیماری های گیاهی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان اصفهان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اصفهان، ایران
AUTHOR
اربابی، م.؛ امامی، م.س.؛ برادران، پ. و جلیانی، ن.، 1394. ارزیابی کارایی کنه کش بایوفنریت (SC 24%) در کنترل کنه دو نقطه ای (Tetranychus urticae Koch) محصولات گلخانه ای. نشریه آفت کش ها در علوم گیاه پزشکی. شماره 1، دوره 2. صفحات 1 تا 9.
1
اربابی، م.، 1394 الف. ارزیابی کارایی دزهای کائولین در کنترل جمعیت کنه های آفت درختان سیب و اثرات سوء آن روی دشمنان طبیعی. گزارش نهایی پروژه تحقیقاتی، موسسه تحقیقات گیاه پزشکی کشور. 29 صفحه.
2
اربابی، م.، 1394 ب. مطالعه کارائی کنه کش فلومایت اسسی 200 در مقایسه با چند کنه کش رایج در کنترل کنه قرمز اروپایی درختان سیب. گزارش نهایی پروژه تحقیقاتی، موسسه تحقیقات گیاه پزشکی کشور. 22 صفحه.
3
اربابی، م.، 1397. بررسی دو دهه کنه کش معرفی شده در کنترل کنه های آفت کشاورزی در ایران. خلاصه مقاله در بیست و سومین کنگره گیاه پزشکی ایران.
4
بیات اسدی، ه. و پارسی، ب.، 1359. مطالعه کنه قرمز اروپایی در ناحیه گرگان و گنبد. نشریه آفات و بیماری های گیاهی، موسسه بررسی آفات و بیماری های گیاهی، سازمان تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی. شماره 48، صفحات 67 تا 74.
5
خانجانی، م. و حدادایرانی نژاد، ک.، 1385 .کنه های زیان آور محصولات کشاورزی ایران .انتشارات دانشگاه بوعلی سینا همدان. 526 صفحه.
6
حسینی قرالی، ع.، 1396. بررسی کارایی سم دیازینون، فرموله شده توسط شرکت های ایرانی علیه کرم خوشه خوار انگور. گزارش نهایی پروژه تحقیقاتی، موسسه تحقیقات گیاه پزشکی کشور. 22 صفحه.
7
رضائی، م.؛ کمالی، ه.؛ شیردل، د. و اکبرزاده، غ.، 1398. تاثیر کنه کش جدید انویدور اسپید (SC24%) در مقایسه با کنه کش های متداول روی کنه قرمز اروپایی در باغ های سیب استان های آذربایجان شرقی، غربی و خراسان رضوی. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 11، شماره 3، صفحات 257 تا 264.
8
سعیدی، ز. و اربابی، م.، 1386. مقایسه کارایی دوازده کنه کش/ حشره کش در دو سطح آلودگی مزارع لوبیا آلوده به کنه تارتن
9
دولکه ای (Tetranychus urticae Koch) در منطقه لردگان استان چهارمحال بختیاری. مجله پژوهش و سازندگی. دوره 20، شماره 3، صفحات 25 تا 31.
10
طالبی، خ.، 1385. سم شناسی آفت کش ها. انتشارات دانشگاه تهران. 492 صفحه.
11
عباسی، م. و قدمیاری، م.، 1397. اثرات کشندگی فلویدازین و فنپروپاترین روی مراحل مختلف زیستی کنه تارتن دو لکه ای Tetranychus urticae Koch. خلاصه مقاله در بیست و سومین کنگره گیاه پزشکی ایران.
12
فرازمند، آ.؛ گلمحمدی، غ.؛ رستگاری، ن.؛ یوسفی، م.؛ قربانی، ر. و توحیدی، م.ت.، 1396. مطالعه کارایی کنه کش انویدور اسپید (SC24%) با ماده موثره abamectin +spirodiclofen در مقایسه با کنه کش های رایج علیه کنه تارتن انجیر Eotetranychus hirsti. نشریه آفت کش ها در علوم گیاه پزشکی. شماره 7، دوره 4، صفحات 33 تا 47.
13
یزدان پاک، آ.؛ استوان، ه.؛ حسامی، ش. و غیبی، م.، 1398. ارزیابی باقی مانده آفت کش ها دیازینون، ایمیداکلوپراید، پرمیکارپ و استامی پراید در محصول سیب زمینی (واریته چیلی) در ایران. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 11، شماره 3، صفحات 265 تا 270.
14
ملک زاده، م.، 1397. کارایی مجصولات تجاری حشره کش کلرپیریفوس ((EC 40.8% روی سپردار زرد شرقی مرکبات. گزارش نهایی پروژه تحقیقاتی، موسسه تحقیقات گیاه پزشکی کشور. 17 صفحه.
15
میرزایی، م.، 1397. بررسی کارایی کنه کش اسپیرودیکلوفن با نام تجاری اینونتور در کنترل کنه تارتن در باغات سیب. خلاصه مقاله در بیست و سومین کنگره گیاه پزشکی ایران.
16
Ashley, J.L.; Herbert, D.A.; Lewis, E.E.; Brewster, C.C. and Huckaba, R., 2006. Toxicity of three acaricides to Tetranychus urticae (Tetranychidae: Acari) and Orius insidiosus (Anthocoridar: Hemiptera). J. Econ. Entomol. Vol. 99, No. 1, pp: 54-59.
17
Alston, D.G. and Reding, M.E., 2003. European red mite, Panonychus ulmi Available in: http:/extension.usu. edu/ipm/redmite.htm.
18
Henderson, C.F. and Tilton, E.W., 1955. Teast with acaricides against the brow wheat mite. J. Econ. Entomol. Vol. 48, pp: 157-161.
19
Kolmes, L.A.F.; Scott, J.G. and Dennedy, T.J., 1991. Dicofel resistance and pharamacok insects. J. Econ. Entomol. Vol. 84, No. 1, pp: 41-48.
20
SAS Inc. 2003. Version 9.1. SAS Institute Inc. Cary. Nc. USA.
21
Penman, D.R.; Chapman, R.B. and Bowie, M.H., 1986. Direct toxicity and repellent activity of pyrethroids against Tetranychus urtica (Acari: Tetranychidae). J. Econ. Entomol. Vol. 79, No. 5, pp: 1183-1187.
22
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر رژیم غذایی حاوی جلبک Sargassum cristaefolium بر برخی از شاخصهای بیوشیمیایی و آنزیمهای گوارشی میگوی وانامی (Penaeus vannamei)
هدف از این مطالعه بررسی اثر جیره غذایی حاوی جلبک قهوهای Sargassum cristaefolium بر آنزیمهای گوارشی هپاتوپانکراس و شاخصهای بیوشیمیایی همولنف میگوی پاسفید غربی (Penaeus vannamei) میباشد. در این مطالعه تعداد 600 قطعه پست لارو میگوی پاسفید غربی با رژیم غذایی حاوی جلبک Sargassum (شامل تیمار شاهد، 5، 10، 20 و 40 گرم در هر کیلوگرم غذا) به مدت 60 روز تغذیه شدند. تیمارها شامل پنج جیره آزمایشی حاوی سطوح صفر، 5، 10، 20 و 40 گرم در هر کیلوگرم بود. در پایان دوره به صورت تصادفی از میگوها نمونهبرداری شد. نتایج نشان داد که میزان فعالیت آنزیم آمیلاز در میگوهای تغذیه شده با رژیم غذایی حاوی 10، 20 و 40 گرم Sargassum افزایش معنیداری نسبت به میگوهای تغذیه شده با جیره شاهد و تیمار 5 گرم داشت (0/0001>p ). هم چنین بیش ترین میزان آنزیم لیپاز در تیمار 40 گرم به ثبت رسید که اختلاف معنیداری با سایر تیمارها نشان داد (0/0001>p ). از طرفی اختلاف معنیداری در میزان اوریکاسید، اوره و کراتینین مشاهده نشد (0/05<p ). بر اساس نتایج به دست آمده با افزایش میزان جلبک Sargassum، غلظت گلوکز در همولنف کاهش پیدا میکند (0/05>p ). به نظر میرسد که استفاده از 40 گرم جلبک S. cristaefolium اثر مثبت بر فعالیت آنزیمهای هضمی داشته و میتواند به عنوان افزودنی مناسب در جیره غذایی میگوی پاسفید غربی استفاده شود.
http://www.aejournal.ir/article_134463_5444e84c7651cd4d90091420d0fc40c8.pdf
2021-04-21
423
430
10.22034/aej.2021.134463
میگوی پاسفید غربی
S. cristaefolium
لیپاز
آمیلاز
همولنف
سعید
تمدنی جهرمی
stamadoni@gmail.com
1
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی. بندرعباس، ایران
AUTHOR
سجاد
پورمظفر
sajjad5550@gmail.com
2
ایستگاه تحقیقات نرم تنان خلیج فارس، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی. بندرلنگه، ایران
LEAD_AUTHOR
محسن
گذری
gozari2020@gmail.com
3
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی. بندرعباس، ایران
AUTHOR
حسین
رامشی
hrameshi@yahoo.com
4
ایستگاه تحقیقات نرم تنان خلیج فارس، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی. بندرلنگه، ایران
AUTHOR
احمدرضا
جبله
j.ahmadreza89@yahoo.com
5
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
اکبری، پ. و فدایی راینی، ر.، 1398. اثر عصاره پلی ساکارید جلبک الوا (Ulva rigida) بر فعالیت آنزیم های گوارشی و فراسنجه های بیوشیمیایی میگوی پاسفید غربی (Litopeneaus vannamei). مجله علمی شیلات ایران. سال 28، شماره 4، صفحات 151 تا 163.
1
اکبری، پ.؛ دباشی، ف. و فدایی راینی، ر.، 1397. مطالعه تغییر شاخص بیوشیمیایی خون و آنتی اکسیدانی کبد در ماهی کفال خاکستری (Mugil cephalus) تغذیه شده با عصاره جلبک قرمز (Jania adhaerens). مجله علمی شیلات ایران. سال 28، شماره 3، صفحات 89 تا 99.
2
اکبری، پ.؛ بلوچ امین، ا. و امینی خویی، ز.، 1397. اثر سطوح مختلف عصاره الکی گیاه سالیکورنیا Salicornia sp بر برخی فراسنجه های بیوشیمیایی خون و آنزیمهای گوارشی ماهی کفال خاکستری (Mugil cephalus). فیزیولوژی و تکوین جانوری. دوره 12، شماره 21، صفحات 1 تا 12.
3
بلوچ، گ.م. و آزدهاکش پور، ا.، 1396. تأثیر کاهشی استفاده از عصاره جلبک قهوهای Sargassum glaucescens در تلفات میگوی Penaeus vannamei. فصلنامه میگو و سختپوستان. دوره 2، شماره 1، صفحات 18 تا 21.
4
پورمظفر، س.؛ حاجی مرادلو، ع.م.؛ احمدنیای مطلق، ح.م. و گودرزی، ر.، 1396. اثرات رژیم غذایی حاوی اسید آلی و سرکه سیب بر یکپارچگی هپاتوپانکراس و فلور باکتریایی روده در میگوی وانامی (Litopenaeus vannamei). محیط زیست جانوری. دوره 12، شماره 3، صفحات 337 تا 346.
5
حیدری، م.؛ قطبالدین، ن. و پذیر، م.خ.، 1396. بررسی تأثیر عصاره جلبک دریایی (Sargassum angustifolium) بر روی شاخصهای رشد و بازماندگی میگوی سفید غربی (Penaeus vannamei). محیطزیست جانوری. دوره 9، شماره 2، صفحات 224 تا 230.
6
خواجه، غ.م.؛ اکبری، س. و سلیمی فرد، ه.، 1385. بررسی میزان برخی پارامترهای بیوشیمیایی همولنف میگوی پرورشی سفید هندی (Fenneropenaeus indicus). مجله پژوهش و سازندگی. دوره 19، شماره 4، صفحات 120 تا 127.
7
دشتیان نسب، ع.؛ مصباح، م.؛ پیغان، ر. و کاکولکی، ش.، 1393. اثر عصاره اتانولی جلبک قهوهای Sargassum angustifolium بر عملکرد رشد، درصد بقاء و مقاومت در برابر ویبریوزیس (Vibrio harveyi) در میگوی پاسفید غربی Penaeus vannamei. مجله علمی شیلات ایران. سال 23، شماره 3، صفحات 31 تا 41.
8
ضیایی نژاد، س.؛ لاوت، د. و آبرومند، ع.، 1396. بررسی فعالیت آنزیمهای گوارشی میگوی سفید غربی در مراحل زیستی مختلف. یافتههای نوین در علوم زیستی. دوره 4، شماره 4، صفحات 373 تا 379.
9
Akbary, P.; Molazaei, E. and Aminikhoei, Z., 2018. Effect of dietary supplementation of Ulva rigida C. Agardh extract on several of physiological parameters of grey mullet, Mugil cephalus (Linnaeus). Iranian Journal of Aquatic Animal Health. 4, pp: 59-68.
10
Ali Mohamed, G.; Daw Amhamed, I.; Alhadi Almabrok, A.B.; Ali Barka, A.; Bilen, S. and Elbeshti, R.T., 2018. Effect of celery (Apium graveolens) extract on the growth, haematology, immune response and digestive enzyme activity of common carp (Cyprinus carpio). Marine Science and Technology Bulletin. 7, pp: 51-59.
11
Cheng, S.Y.; Lee, W.C.; Shieh, L.W. and Chen, J.C., 2004. Increased production and excretion of urea in the kuruma shrimp (Marsupenaeus japonicus) exposed to combined environments of increased ammonia and nitrite. Archives of Environmental Contamination and Toxicology. 47, pp: 352-362.
12
Chiew, S.L., 2011. Dietary administration of a Gracilaria tenuistipitata extract enhances the immune response and resistance against Vibrio alginolyticus and white spot syndrome virus in the white shrimp Penaeus vannamei. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 31, pp: 848-855.
13
Choi, H.; Lee, B.J. and Nam, T.J., 2015. Effect of dietary inclusion of Pyropia yezoensis extract on biochemical & immune responses of olive flounder Paralichthys olivaceus. Aquaculture. Vol. 435, pp: 347-353.
14
Citarasu, T.; Sivaram, V.; Immanuel, G.; Rout, N. and Murugan, V., Influence of selected Indian immunostimulant herbs against white spot syndrome virus (WSSV) infection in black tiger shrimp, Penaeus monodon with reference to haematological, biochemical and immunological changes. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 21, pp: 372-384.
15
Defoirdt, T.; Sorgeloos, P. and Bossier, P., 2011. Alternatives to antibiotics for the control of bacterial disease in aquaculture. Current opinion in microbiology. 14, pp: 251-258.
16
Fernandez Gimenez, V.; Garcia-Carren, F.L.; Navarrete Del Toro, M.A. and Fenucci, J.L., 2001. Digestive proteinases of red shrimp Pleoticus muelleri (Decapada, Penaeoidea): Partial characterization and relationship with molting. Comparative Biochemistry and Physiology (B). Vol. 130, pp: 331-338.
17
Holmstroom, K.; Graslund, S.; Wahlstroom, A.; Poungshompoo, S.; Bengtsson, B.E. and Kautsky, N., 2003. Antibiotic use in shrimp farming and implications for environmental impacts and human health. International J of food science and technology. Vol. 38, pp: 255-266.
18
Gupta, and Abu-Ghannam, N., 2011. Bioactive potential and possible health effects of edible brown seaweeds. Trends Food Science and Technology. Vol. 22, pp: 315-326.
19
Li, Y.X. and Kim, S.K., 2011. Utilization of seaweed derived ingredients as potential antioxidants and functional ingredients in the food industry: An Food Science Biotechnology. Vol. 20, pp: 1461-1466.
20
Ling, S; Wu, C.C.; Liu, C.H. and Lian, J.L.; 2013. Effects of the water extract of Gynura bicolor (Roxb. & Willd.) DC on physiological and immune responses to Vibrio alginolyticus infection in white shrimp (Penaeus vannamei). Fish & Shellfish Immunoloogy. 35, pp: 18-25.
21
Madibana, M.G.; Mlambo, V.; Lewis, B. and Fouché, C., 2017. Effect of graded levels of dietary seaweed (Ulva sp.) on growth, hematological & serum biochemical parameters in dusky kob, Argyrosomus japonicus, sciaenidae. Egyptian J of aquatic research. Vol. 43, pp: 249-254.
22
Morshedi, ; Nafisi Bahabadi, M.; Sotoudeh, E.; Azodi, M. and Hafezieh, M., 2017. Nutritional evaluation of Gracilaria pulvinata as partial substitute with fish meal in practical diets of barramundi (Lates calcarifer). Journal of applied phycology. Vol. 2, pp: 1-11.
23
Nagur Babu, K.; Pallavi, P.N.; Reddy, D.C. and Kalarani, V., 2012. Effect of 5-Hydroxytryptamine and dopamine on the carbohydrate metabolism in the shrimp, Penaeus monodon (Fabricius). World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 4, pp: 586-593.
24
Ng, W.K.; Koh, C.B.; Sudesh, K. and Siti-Zahrah, A., 2009. Effects of dietary organic acids on growth, nutrient digestibility and gut microflora of red hybrid tilapia, Oreochromis, and subsequent survival during a challenge test with Streptococcus agalactiae. Aquaculture Research. Vol. 40, pp: 1490-1500.
25
Omont, A.; Quiroz-Guzman, E.; Tovar-Ramirez, D. and Peña-Rodríguez, A., 2019. Correction to: Effect of diets supplemented with different seaweed extracts on growth performance and digestive enzyme activities of juvenile white shrimp Penaeus vannamei. Journal of Applied Phycology. 31, pp: 1443.
26
Pourmozaffar, S.; Hajimoradloo, A. and Miandare, H.K., 2017. Dietary effect of apple cider vinegar and propionic acid on immune related transcriptional responses and growth performance in white shrimp, Penaeus vannamei. Fish & shellfish immunology. 60, pp: 65-71.
27
Pourmozaffar, S., Hajimoradloo, A.; Paknejad, H. and Rameshi, H., 2019a. Effect of dietary supplementation with apple cider vinegar and propionic acid on hemolymph chemistry, intestinal microbiota and histological structure of hepatopancreas in white shrimp, Penaeus vannamei. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 86, pp: 900-905.
28
Schleder, D.D.; Peruch, L.G.B.; Poli, M.A.; Ferreira, T.H.; Silva, C.P.; Andreatta, E.R.; Hayashi, L. and do Nascimento Vieira, F., 2018. Effect of brown seaweeds on Pacific white shrimp growth performance, gut morphology, digestive enzymes activity and resistance to white spot virus. Aquaculture. Vol. 495, pp: 359-365.
29
Sha; Y.; Wang, L.; Liu, M.; Jiang, K.; Xin, F. and Wang, B., 2016. Effects of lactic acid bacteria and the corresponding supernatant on the survival, growth performance, immune response and disease resistance of Penaeus vannamei. Aquaculture. Vol. 452, pp: 28-36.
30
Sirirustananun, N.; Chen, J.C.; Lin, Y.C.; Yeh, S.T.; Liou, C.H.; Chen, L.L.; Sim, S.S. and Chiew, S.L, 2011. Dietary administration of a Gracilaria tenuistipitata extract enhances the immune response and resistance against Vibrio alginolyticus and white spot syndrome virus in the white shrimp Penaeus vannamei. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 31, pp: 848-855.
31
Sivagnanavelmurugan, M.; Marudhupandi, T.; Palavesam, A. and Immanuel, G., 2012. Antiviral effect of fucoidan extracted from the brown seaweed, Sargassum wightii, on shrimp Penaeus monodon postlarvae against white spot syndrome virus. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 43, pp: 697-706.
32
Talpur, D., 2014. Mentha piperita (Peppermint) as feed additive enhanced growth performance, survival, immune response and disease resistance of Asian seabass, Lates calcarifer (Bloch) against Vibrio harvey infection. Aquaculture. Vol. 420- 421, pp: 71-78.
33
Widanarni, W.; Taufik, A.; Yuhana, M. and Ekasari, J., 2019. Dietary mannan oligosaccharides positively affect the growth, digestive enzyme activity, immunity and resistance against Vibrio harveyi of pacific white shrimp (Penaeus vannamei) larvae. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. 19, pp: 271-278.
34
Yu, Y.; Chen, W.D.; Liu, Y.J.; Niu, J.; Chen, M. and Tian, L.X., 2016. Effect of different dietary levels of Gracilaria lemaneiformis dry power on growth performance, hematological parameters and intestinal structure of juvenile Pacific white shrimp (Penaeus vannamei). Aquaculture. Vol. 450, pp: 356-362.
35
Zhao, H.X.; Cao, J.M.; Wang, A.L.; Du, Z.Y.; Ye, C.X.; Huang, Y.H.; Lan, H.B.; Zhou, T.T. and Li, G.L., 2012. Effect of long-term administration of dietary β-1,3-glucan on growth, physiological, and immune responses in Penaeus vannamei. Aquaculture International. 20, pp: 145-158.
36
ORIGINAL_ARTICLE
پویایی جمعیت صدف آنودونت (Anodonta cygnea) در تالاب انزلی
مطالعه تحقیقاتی در زمینه پراکنش جمعیتی و شاخص های زیست سنجی صدف آنودونت (Anodonta cygnea) طی سال 1395 در تالاب انزلی انجام گردید. برای این منظور 14 ایستگاه در نواحی مختلف تالاب انزلی تعیین شد. شاخص های زیست سنجی شامل طول، عرض و ارتفاع صدف های صید شده توسط کولیس با دقت 0/01 میلی متر اندازه گیری و سن صدف ها نیز با مشاهده حلقه های رشد سالیانه روی کفه ها تعیین گردید. بیش ترین و کم ترین درصد فراوانی صدف ها، به ترتیب متعلق به ایستگاه های بهمبر با 33 درصد و شیجان با 8 درصد بود. هم چنین بیش ترین پراکنش متعلق به ایستگاه ورودی ماهروزه به بهمبر بود. نتایج نشان داد پراکنش این صدف ها بیش تر در نقاط مرکزی و غرب تالاب انزلی بود. ترکیب سنی صدف ها بین 2 الی 9 سال بوده که غالبیت با سنین 5 الی 7 سال می باشد. بیش ترین و کم ترین ترکیب میانگین وزنی و طولی به ترتیب برای ایستگاه های هندخاله (49/27±203/43 گرم و 7/27±13/45 سانتی متر) و بهمبر (34/60±78/83 گرم و 1/88±8/63 سانتی متر) محاسبه شد. با استفاده از نرم افزار Fisat ll و بر اساس روش شیفرد طول بی نهایت 13/65 سانتی متر و میزان ضریب رشد سالانه 0/48 محاسبه گردید. میزان مرگ و میر طبیعی 1/154 برآورد شد. بیش ترین ذخایر جوان در شهریور و اوایل مهرماه مشاهده شد. این موضوع نشان دهنده وجود ذخایر جوان از دوره تولیدمثل و اضافه شدن نسل جدید به جمعیت می باشد. از ذخایر ترکیب سنی ماهروزه به بهمبر که محل زیست صدف های جوان تر بود، می توان جهت برنامه های تکثیر و پرورش این گونه و حفظ ذخایر آن ستفاده نمود.
http://www.aejournal.ir/article_134477_501725c738d3a7b16f1be946405b20fa.pdf
2021-04-21
431
438
10.22034/aej.2021.134477
تالاب انزلی
صدف آنودونت
زیست سنجی
شاخص های رشد
محمد
صیاد بورانی
mohammadborani@yahoo.com
1
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندر انزلی، ایران
LEAD_AUTHOR
آرزو
وهاب نژاد
avn9400@gmail.com
2
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
علیرضا
میرزاجانی
armirzajani@gmail.com
3
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندر انزلی، ایران
AUTHOR
سهراب
دژندیان
sohrab_dejandian@yahoo.com
4
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندر انزلی، ایران
AUTHOR
عادل
حسین جانی
adel_nd@yahoo.com
5
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندر انزلی، ایران
AUTHOR
اشجع اردلان، ا.؛ خوشخو، ژ.؛ ربانی، م. و معینی، س.، 1385. مقایسه میزان فلزات سنگین (Cd، Pb، Cu، Zn و Hg) در آب، رسوبات بافت نرم دوکفه ای آنودونت تالاب انزلی (Anodonta cygnea) در دو فصل پاییز و بهار (1383-1384). مجله پژوهش و سازندگی. امور دام و آبزیان. دوره 19، شماره 4، صفحات 104 تا 113.
1
اشجع اردلان، ا.؛ خوشخو، ژ.؛ معینی، س.ع. و بهزادی، د.، 1385. شمارش کلونی های باکتریایی دوکفه ای Anodonta cygnea در تالاب انزلی (منطقه سلکه) در دو فصل پاییز و بهار (1383 تا 1384). مجله علوم پایه دانشگاه آزاد اسلامی دوره 17، شماره 1، صفحات 37 تا 50.
2
پروانه، س.ا.، 1374. بررسی ویژگی های زیستی و پراکنش صدف آنودونت در حوزه تالاب انزلی. گزارش نهایی پروژه، مرکز تحقیقات شیلاتی استان گیلان. 42 صفحه.
3
توکلی، ب. و ثابت رفتار، ک.، 1381. مطالعه تأثیر فاکتورهای مساحت، جمعیت و تراکم جمعیت حوزه آبخیز بر روی آلودگی رودخانه های منتهی به تالاب انزلی. مجله محیط شناسی، ویژه نامه تالاب انزلی. دوره 28، صفحات 51 تا 58.
4
زارع، پ. و یونس زاده، ب.، 1388. بررسی رشد و ساختارسنی صدف Anodonta cygnea در سه نهر منتهی به رودخانه پسِیخان. مجله علمی شیلات ایران. سال 3، شماره 4، صفحات 1 تا 11.
5
کوهی، ش.؛ خلیلی، س. و ایمانپور، م.ر.، 1397. بررسی تغییرات پاتولوژیک بافت کبد، آبشش و روده بچه ماهی سفید kutum Rutilus در معرض قرار گرفته با آب تالاب انزلی. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 8، شماره 3، صفحات 133 تا 144.
6
نوروزی، ن.؛ قربانی، ر.؛ حسینی، ع. و هدایتی، ع.ا.، 1397. روند جایگزینی کفزیان در حوضه جنوب شرقی دریای خزر و ارتباط آن با شرایط تروفی اکوسیستم. فصلنامه زیست شناسی جانوری. سال 10، شماره 4، صفحات 489 تا 498.
7
Augspurger, T.; Keller, A.E.; Black, M.C.; Cope, W.G. and Dwyer, F.I., 2003. Water quality guidance for protection of freshwater mussels (unionidae) from ammonia exposure, Environ. Toxicol. Chem. Vol. 22, pp: 2569-2575.
8
Chojnacki, J.C.; Grzeszczyk-Kowalska, A. and Buczek, W., 2009. Biometrics of the swan mussels Anodonta cygnea in the Southwest part of the Szczecin Lagoon in 2007. EJPAU. Vol. 20, No. 1, pp: 225-230.
9
Chojnacki, J.C.; Rosinska, B.; Rudkiewicz, J. and Smola, M., 2011. Biometrics of the swan mussel Anodonta cygnea, Polish J. of Environment. Study. Vol. 20, No. 1, pp: 225-230.
10
Cyr, H., 2008. Physical forces constrain the depth distribution of the abundant native mussel Elliptio complanata in lakes. Freshwater Biology. Vol. 53, pp: 2414-2425.
11
Douda, K., 2011. The environmental biology and conservation of the flagship groups of stream macroinvertebrate species in the Czech Republic, PhD Thesis, Czech university of life sciences Prague, Faculty of Environmental Sciences, Department of Ecology.
12
Dudgeon, D. and Morton, B., 1983. The population dynamics and sexual strategy of Anodonta woodiana in Plover cove reservoir, Hong kong, J. Zool.lond. Vol. 201, pp: 16-183.
13
1997. Review of the state of world fishery resources: Marine fisheries. FAO Fisheries Circular. 920 FIRM/C920. FAO, Rome.
14
Erdilal, R.; Kosal-Sahin, S. and Gulyavus, H., 2007. Comparison of the flesh yields and chemical compositions of two freshwater clam species (Unio pictorum and Anodonta cygnea). Istanbul University Journal of fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 23, No. 9.
15
Lie, J., 1993. Estimation of filtration rate of zebra mussel. Published by the zebra mussel research program. pp: 1-3
16
Muller, D. and Patzner, A., 1996. Growth and age structure of the swan mussel Anodonta cygnea (L.) at fifferent depths in lake Mattsse (Salzburg, Austria). Hydrobiologia. Vol. 341, pp: 65-70.
17
Munro, J.L. and Pauly, D., 1983. A simple method for comparing the growth of fishes and invertebrates. ICLARM Fishbyte. Vol. 1, No. 1, pp: 5-6.
18
Novais, A.; Souza, A.T.; Illari, M.; Pascoal, C. and Souza, R., 2015. From water to land: How an invasive clam may function as a resource pulse to terrestrial invertebrates, Science of the Total Environment. Vol. 538, pp: 664-671.
19
Pauly, D. and Morgan, G.R., 1984. Length-based methods in fisheries research. Intemational center for living aquatic resources management, Kuwait institute for scientific research. 468 p.
20
Rosinska, B.; Chojnacki, J.C.; Lewandowska, A.; Matwiejczuk, A. and Samiczak, A., 2008. Biometrics of the swan mussels (Anodonta cygnea) from choze laks in the Pomeranian Region, Limnological Review. Vol. 8, No. 1-2, pp: 79-84.
21
Sparre, P. and Venema, S.C., 1992. Introduction to tropical fish stock assessment. Part 1-manual. FAO Press. Rome, Italy. 376 p.
22
Sparre, P. and Venema, S.C., 1998. Introduction to tropical fish stock assessment. FAO technical paper, 306/1. FAO, Rome, Italy. 407 p.
23
Strayer, D.l., 2014. Understanding how nutrient cycles and freshwater mussels (Unionidae) affect one another. Hydrobiologia. Vol. 735, pp: 277-292.
24
Taylor, C.C., 1960. Temperature, growth and mortality-the Pacific cockle. Journal du Conseil International Pour Lexploration de la Mar. Vol. 26, pp: 117-124.
25
Zając, K., 2002. Habitat preferences of swan mussel Anodonta cygnea (Linnaeus 1758) (Bivalvia, Unionidae) in relation to structure and successional stage of floodplain waterbodies. Ekologia (Bratislava). Vol. 21, No. 4, pp:
26
Zając, K., 2004. Polska czerwona księga zwierząt bezkręgowce, Instytut Ochrony Przyrody PAN, Kraków. 447 p.
27
Zajac, K.; Zajac, T. and Cmiel, A., 2016. Spatial distribution and abundance of Unionidae mussels in aeutrophic floodplain lake. Limnologica. Vol. 58, pp: 41-48.
28
Weber, E., 2005. Population size and structure of three mussels species (Bivalvia: Unionidae) in a northeastern German river with special regard to influences of environmental factors. Hydrobiologia. Vol. 537, pp: 169-183.
29
Wirbellose. 2001. Grosse Teichmuschel (Schwanenmuschel). Anodonta cygnea L. Retrieved September 7, 2006, from http://www.bsh-umweltladen.de/bsh/2000-wirbelloser.htm (in German)
30
Vakily, J.M., 1992. Determination and comparison of bivalve growth rate with emphasis on Thailand and other tropical areas. ICLARM Technique. Reproduction. Vol. 36, 125 p.
31
ORIGINAL_ARTICLE
جذب عناصر در کرمهای خاکی تحت تأثیر کودهای شیمیایی در خاک باغ
کرمهای خاکی به عنوان نشانگرهای جذب برای اثبات دسترسی زیستی کودهای شیمیایی در خاک، به کار گرفته میشوند. این تحقیق با هدف تعیین میزان جذب برخی عناصر در تعدادی از گونه های کرم های خاکی در خاک یک باغ اجرا شد. در این تحقیق میزان جذب عناصر نیتروژن، فسفر، پتاسیم، روی و آهن حاصل از کاربرد کودهای شیمیایی مختلف اوره، آمونیوم سولفات، دی آمونیوم فسفات، سولوپتاس، کود NPK، مخلوط کود NPK و کود دامی، کلات روی و کلات آهن در پنج گونه کرم خاکی، مورد بررسی قرار گرفت. تیمارها در سه تکرار به صورت طرح بلوکهای کامل تصادفی اعمال شد و دادهها در قالب تجزیه واریانس، تحلیل آماری شد. نتایج نشان داد کرمهای خاکی سطحزی (اپیجئیک) در جذب عناصری مثل نیتروژن و فسفر فعالیت بیش تری داشتهاند. در این میان، گونه E. fetida در جذب نیتروژن از اوره (72%) و آمونیوم سولفات فعال تر بوده اما در جذب فسفر از کود دی آمونیوم فسفات فعال نبوده است. از طرفی، وجود مواد آلی در تیمارهای کودی، باعث جذب کم تر نیتروژن و فسفر توسط کرمها شده است و در این شرایط، گونه های آنسیک، در فرآیند جذب، ضعیف تر عمل کردهاند. کلاته شدن نیتروژن و فسفر در مولکولهای ترکیبات آلی موجب کاهش قدرت جذب آن ها شده است. هم چنین کرم گونه E. fetida نسبت به سایر گونهها تمایل بیش تری به جذب عنصر آهن (52%) و جذب عنصر روی (50%) در خاک تیمار شده نسبت به خاک شاهد نشان داد. به منظور کاهش اثرات منفی کودهای شیمیایی بر موجودات زندهی خاک، توصیه میشود در خاکهای کم عمق، میزان مصرف آن ها کاهش یابد.
http://www.aejournal.ir/article_134487_48d124b25b485fe088f8ce762be37fc6.pdf
2021-04-21
439
448
10.22034/aej.2021.134487
کود شیمیایی
کرم خاکی
Eisenia Fetida
جذب
نیتروژن
فسفر
مجتبی
یحیی آبادی
yahyabadi@gmail.com
1
بخش تحقیقات خاک و آب، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی اصفهان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اصفهان، ایران
LEAD_AUTHOR
امیر حسین
حمیدیان
a.hamidian@ut.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج ، ایران
AUTHOR
سهراب
اشرفی
sohrab.ashrafi@ut.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج ، ایران
AUTHOR
جنابی حق پرست، ر.؛ گلچین، ا. و کهنه، ا.، 1392. مطالعه اثر غلظتهای مختلف کادمیوم بر رشد کرم خاکی گونه ایزنیا فتیدا در یک خاک آهکی. نشریه آب و خاک (علوم و صنایع کشاورزی). جلد 27، شماره 1، صفحات 24 تا 35.
1
سینکاکریمی، م.؛ سلگی، ع. و حسین زاده، ا.، 1397. تعیین تفاوت در حساسیت گونههای مختلف کرمخاکی به سرب با استفاده از سطوح پیش پراکسیداسیون لیپیدی و آنتی اکسیدانی کل. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 10، شماره 2، صفحات 261 تا 268.
2
لکزیان، ا.؛ نصیری محلاتی، م. و حافظ دربانی، م.، 1382. انباشتگی فلزات سنگین در کرم خاکی آیزنیا فتیدا. مجله علوم و صنایع کشاورزی. دوره 17، شماره 2.
3
یحییآبادی، م.، 1396. مقایسه توانایی دو گونه کرم خاکی Eisenia fetida و Dendrobaena veneta در تولید ورمی کمپوست. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 4، صفحات 339 تا 346.
4
Amaral, F.S. and Rodrigues, A.S., 2005. Metal accumulation and apoptosis in the alimentary canal of Lumbricus terrestris as a metal biomarker. Vol. 18, pp: 199-206.
5
Beyer, W.N. and Stafford, C., 1993. Survey and evaluation of contaminants in earthworms and in soils derived from dredged material at confined disposal facilities in the Great Lakes Region. Environ Monit Assess. Vol. 24, pp: 151-165.
6
Blakemore, R.J., 2008. Cosmopolitan Earthworms an Eco Taxonomic Guide to the Species. (3rd Edition). VermEcology, Yokohama, Japan. 757 p.
7
Contreras-Ramos, S.M.; Álvarez-Bernal, D. and Dendooven, L., 2009. Characteristics of earthworms (Eisenia fetida) in PAHs contaminated soil amended with waste water sludge or vermicompost. Appl. Soil Ecol. Vol. 41, pp: 269-276.
8
Curry, J.P. and Schmidt, O., 2007. The feeding ecology of earthworms, a review. Pedo-biologia. Vol. 50, pp: 463-477.
9
Edwards, C.A., 2004. The Importance of Earthworms as Key Representatives of the Soil Fauna. In Earthworm cology; Edwards, C.A., Ed.; CRC Press LLC: Boca Raton, FL, USA. pp: 3-11.
10
Edwards, C.A. and Bohlen, P.J., 1996. Biology and Ecology of Earthworms. Chapman & Hall, London. 426 p.
11
Hirano, T. and Tamae, K., 2011. Earthworms and soil pollutants. Sensors (Basel). Vol. 11, No. 12, pp: 11157-11167.
12
Juwarkar, A.A.; Singh, S.K. and Mudhoo, A., 2010. A comprehensive overview of elements in bioremediation. Rev. Environ. Sci. Biotechn. Vol. 9, pp: 215-288.
13
Katz, S.A. and Jennis S.W., 1983. Regulatory compliance monitoring by Atomic Absorption Spectroscopy. VCH, Weinheim/New York.
14
Kenette, D.; Hendershot, W.; Tomlin, A. and Sauvé, S., 2002. Uptake of trace metals by the earthworm Lumbricus terrestris L. in urban contaminated soils. Appl Soil Ecol. Vol. 19, pp: 191-198.
15
Kizilkaya, R. and Hepşen, Ş., 2007. Microbiological properties in earthworm Lumbricus terrestris Cast and surrounding soil amended with various organic wastes. Communications in Soil Science and Plant Analysis. Vol. 8, pp: 2861-2876.
16
Lanno, R.; Wells. J.; Conder, J. and Basta, N., 2004. The bioavailability of chemicals in soil for earth-worms. Ecotoxicol Environ Saf. Vol. 57, pp: 39-47.
17
Lukkari, T.; Taavitsainen, M.; Vaisanen, A. and Haimi, J., 2004. Effects of heavy metals on earthworms along contamination gradients in organic rich soils. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 59, pp: 340-348.
18
Nahmani, J.; Hodson, M.E.; Devin, S. and Vijver, M.G., 2009. Uptake kinetics of metals by the earthworm Eisenia fetida exposed to field-contaminated soils. Environ Pollut. Vol. 157, pp: 2622-2628.
19
Nechitaylo, T.Y.; Yakimov, M.M.; Godinho, M.; Timmis, K.N.; Belogolova, E.; Byzov, B.A.; Kurakov, A.V.; Jones, D. and Golyshin, L.P.N., 2010. Effect of the earthworms Lumbricus terrestris and Aporrectodea caliginosa on bacterial diversity in soil. Microbial. Ecol. Vol. 59, pp: 574-587.
20
Neuhauser, E.; Cukic, Z.V.; Malecki, M.R.; Loehr, R.C. and Durkin, P.R., 1995. Bioconcentration and biokinetics of heavy metals in the earthworm. Environ Pollut. Vol. 89, pp: 293-301.
21
Peijnenburg, W. and Vrijver, M., 2009. Earthworms and their use in ecotoxicological modeling. In: Deviller J (ed) Ecotoxicology modeling. Springer, Heidelberg. pp: 177-204.
22
Schaefer, M.; Petersen, S.O. and Filser, F., 2005. Effects of Lumbricus terrestris, Allolobophora chlorotica and Eisenia fetida on microbial community dynamics in oil contaminated soil. Soil Biol. Biochem. Vol. 37, pp: 2065-2076.
23
Sinkakarimi, M.H.; Solgi, E. and Hosseinzadeh Colagar, A., 2020. Interspecific differences in toxicological response and subcellular partitioning of cadmium and lead in three earthworm species. Chemosphere. Vol. 238, pp: 124595.
24
Tejada, M.; Gómez, I. and Deltoro, M., 2011. Use of organic amendments as a bioremediation strategy to reduce the bioavailability of chlorpyrifos insecticide in soils. Effects on soil biology. Ecotox. Environ. Safe. Vol. 74, pp: 2075-2081.
25
Tischer, S., 2009. Earthworms (Lumbricidae) as bioindicators: the relationship between in-soil and in-tissue heavy metal content. Pol J Ecol. Vol. 57, pp: 531-541.
26
Yahyaabadi, M.; Hamidian, A.H. and Ashrafi, S., 2018. Dynamic of earthworm species at different depths of orchard soil receiving organic or chemical fertilizer amendments. Eurasian J. of soil sci. Vol. 7, No. 4, pp: 318-325.
27
Zhang, Z.S. and Zheng, D.M., 2009. Bioaccumulation of total and methyl mercury in three earthworm species (Drawida sp., Allolobophora sp., and Limnodrilus sp.). Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 83, pp: 937-942.
28
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه ساختار جوامع ماکروبنتوزها در آب های ساحلی جزیره قشم
جهت تعیین تراکم، توزیع و تنوع ساختارجوامع ماکروبنتوزی در آب های ساحلی جزیره قشم (اسکله مسافربری و پارک ساحلی) 6 ایستگاه انتخاب و به صورت فصلی در سال 1389مورد مطالعه قرار گرفت.ماکروبنتوزهای جنس Pitar و Pronospio، به ترتیب با فراوانی های نسبی 28/44 و 11/64% نسبت به سایر جنس ها از فراوانی بیش تری برخوردار بودند. نتایج آزمون همبستگی پیرسون نشان داد که بین تراکم ماکروبنتوزها و موادآلی کل ارتباط معکوس و معنی داری در سطح احتمال 99 درصد وجود داشته است. نتایج نشان داد بیش ترین میزان تنوع ماکروبنتوزها در ایستگاه 2 و کم ترین آن در ایستگاه 6 بوده است. نتایج آنالیز خوشه ایی نشان داد که بیش ترین ضریب تشابه در ساختار جمعیتی ماکروبنتوزها متعلق به ایستگاه های 5 و 6 (45/7%) و 1 و 2 (44/3%) بوده است. تغییرات سالانه شاخص های تنوع نشان داد که هر دو منطقه از آلودگی در حد متوسطی (3-1) برخوردار بوده و از نظر شرایط اکولوژیک نیز در رتبه متوسط جای دارند. نتایج آنالیز واریانس دوطرفه نشان داد که اثرات مکان (ایستگاه) و زمان (فصل) بر تغییرات فراوانی کل و شاخص های به دست آمده بی اثر بوده است.
http://www.aejournal.ir/article_134509_e35c9b50f6e7f3f107ebd0aa3e20047e.pdf
2021-04-21
449
456
10.22034/aej.2021.134509
ماکروبنتوز
تنوع زیستی
آب های ساحلی
قشم
محمدرضا
طاهری زاده
taheri.1965@gmail.com
1
گروه زیست دریا، دانشکده علوم وفنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
غلامعلی
اکبرزاده چماچایی
akbarzadeh385@gmail.com
2
بخش اکولوژی، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقاتی علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، م.، 1384. بررسی هیدرولوژی هیدروبیولوژی خلیج فارس و آب های محدوده استان هرمزگان. مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 130 صفحه.
1
اشجع اردلان، ا.، 1372. شناسایی و بررسی پراکنش دوکفه ای ها مناطق جذر و مدی خلیج چابهار و سواحل اطراف آن. پایان نامه کارشناسی ارشد بیولوژی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی ایران واحد شمال. 121 صفحه.
2
اکبرزاده، غ.، 1383. بررسی اثرات زیست محیطی ناشی از فعالیت کارگاه های پرورش میگو در منطقه تیاب (استان هرمزگان). موسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، بندرعباس. 145 صفحه.
3
جوکار، ک.، 1383. بررسی شرایط هیدرولوژی خرویات خوران منشعب از لافت و خمیر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی ایران. 132 صفحه.
4
دقوقی، ب .، 1380. مطالعه شناسایی و تعیین پراکنش و فون نرم تنان جزیره فارور با تأکید بر معرفی گونه های جدید گزارش نشده. پایان نامه کارشناسی ارشد بیولوژی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال. 272 صفحه.
5
شریفی نیا، م.؛ طاهری زاده، م. و ایمانپورنمین، ج.، 1397. ارزیابی بوم شناختی تأثیر پساب مزارع پرورش میگو بر ساختار جوامع بزرگ بی مهرگان (مطالعه موردی: خور تیاب-استان هرمزگان) کفزی با استفاده از شاخص زیستی BENTIX. فصلنامه علمی محیط زیست جانوری. سال 10، شماره 1، صفحات 302 تا 312.
6
شهباز، آ.، 1382. بررسی تنوع زیستی و اکولوژیک ماکروفون ها و ماکروفیت ها پهنه جذر و مدی بندرلنگه و اهمیت شیلاتی. پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات دانشگاه آزاد واحد تهران شمال.
7
عطاران فریمان، گ.، 1380. پراکندگی و تنوع جمعیت پرتاران در خور باهوکلات، شمال شرقی دریای عمان. مجله پژوهش و سازندگی. دوره 14، شماره 4، صفحات 79 تا 83.
8
مرکز تحقیقات شیلات خلیج فارس. 1374. دستورالعمل نمونه برداری و بررسی های آزمایشگاهی بنتوزها و پلانکتون ها در آب های جنوب. بخش بیولوژی. 124 صفحه.
9
میرزاباقری، د.؛ امراللهی بیوکی، ن. و طاهری زاده، م.، 1397. اثرات عوامل محیطی بر الگوی تنوع و فراوانی ماکروبنتوزهای همراه با راسته زوآنتاریا (Zoantharia) در ناحیه بین جزر و مدی جزیره هرمز. فصلنامه علمی محیط زیست جانوری. سال 10، شماره 2، صفحات 291 تا 302.
10
نیکوئیان، ع.، 1376. بررسی تراکم، پراکنش، تنوع و تولید ثانویه بی مهرگان کفزی (ماکروبنتوزها) در خلیج چابهار. رساله دکترای بیولوژی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات. 195 صفحه.
11
APAH. 1998. Standard methods for the examination of water and waste water.,1989. 17.th. Edition. 1450 p.
12
Chainho, P.; Costa, J.L.; Chaves, M.L.; Dauer, D.M. and Costa, M.J., 2007. Influence of seasonal variability in benthic invertebrate community structure on the use of biotic indices to assess the ecological status of a Portuguese estuary. Marine Pollution Bulletin. Vol. 54, No. 1586-1597, pp: 1-12.
13
Clarke, K.R. and Warwick, R.M., 1994. Change in Marine Communities: An approach to Statistical Analysis and Interpretation. Natural Env. Res. Council, UK.144 p.
14
Emara, H.T., 1990. Study of Oxygen and phosphate in the water of the Southern Arabian Gulf and the Gulf of Oman. ActaAdriat. Vol. 31, pp: 45-57.
15
Girgin, S., 2010. Evaluation of the benthic macroinvertebrate distribution in a stream environment during summer using biotic index. Int. Environ. Sci. Tech. Vol. 7, pp: 11-16.
16
Holme, N.A. and McIntyre, D.A., 1984.Methods for the Study of Marine Benthos.2nd Ed. ISP Handbook 16 p.
17
Ludwig, J.A. and Raynolds, J.F., 1988. Statistical ecology, A primer on methods and computing. pp: 85-103.
18
Menhinick, E.F., 1964. A comparison of some species diversity Indices applied to sample of filed insect. ecology. Vol. 45, pp: 859-861.
19
Mohammadi Roozbahani, M.; Nabavi, S.M.; Farshchi, P. and Rasekh, A., 2010. Studies on the benthic macroinvertebrates diversity species as bio-indicators of environmental health in Bahrekan Bay (Northwest of Persian Gulf). African Journal of Biotechnology. Vol. 9, No. 39, pp: 1-9.
20
Mooraki, N.; Esmaeli Sari, A.; Soltani, M. and Valinassab, T., 2009. Spatial distribution and assemblage structure of macrobenthos in a tidal creek in relation to industrial activities. Int. J. Environ. Sci. Tech. Vol. 6, pp: 651-662.
21
Nouri, J.; Karbassi, A.R. and Mirkia, S., 2008. Spatial distribution and assemblage structure of macrobenthos in a tidal creek in relation to industrial activities. Int. J. Environ. Sci. Tech. Vol. 6, pp: 651-66.
22
Pielou, E.G., 1966. The measurement of diversity in different type of biological collection. Journal of Therical Biology. Vol. 13, pp: 131-144.
23
Prior, A.; Miles, A.C.; Sparrow, A.J. and Price, N., 2004. Development of a classification scheme for the marine benthic invertebrate component, water framework directive. Phase I & II. Transitional and Coastal Waters. Environment Agency, Rio House, Waterside Drive, Aztec West, lmondsbury, Bristol, BS324UD.ISBN 1844322823.
24
Sanders, H.L., 1968. Marin benthic diversity: A comparative study. Amer. Nat. Vol. 102, pp: 243-282.
25
Seralathan, P.; Meenakshikntty, N.R.; Asarafe, K.V. and Padamalal, D., 1993. Sediment and organic carbon distributions in the Cochin harbor area. 21 p.
26
Siapatis, A.M.; Giannoulaki, V.D.; Valavanis, A.; Palialexis, E.; Schismenou, A.; Machias, V. and Somarakis, S., Modeling potential habitat of the invasive ctenophore Mnemiopsis leidyi in Aegean Sea. Hydrobiologia. Vol. 612, pp: 281-295.
27
Welch, E.B., 1992. Ecological effect and waste water. 2nd ed. 445 p.
28
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی نواحی مختلف بین جزر و مدی بستر سنگی بر اساس الگوی پراکنش ماکروبنتوزها در استان بوشهر، خلیج فارس
به منظور بررسی تشابه الگوی پراکنش ماکروبنتوزها در منطقه بین جزر و مدی در استان بوشهر، نمونهبرداری در دو ایستگاه گلستان و بندر رستمی با بستر قلوه و پارهسنگی انجام گردید. نمونه برداری در سه فصل زمستان (1392)، تابستان و بهار (1393) و به صورت تصادفی، با استفاده از کوادرات 0/5 × 0/5 متر مربع در زمان حداکثر جزر انجام شد. نمونه ها مورد شناسایی مورفولوژیک قرار گرفتند و 1495 عدد در مترمربع ماکروبنتوز شناسایی شد. گونههای دارای ویژگی های زیستی، تغذیهای و یا تولیدمثلی مشابه در یک گروه تاکسونی قرار داده شد و 12 گروه تاکسونی ماکروبنتوز دستهبندی گردید. طبق نتایج به دست آمده اختلاف معنی داری بین فصول وجود نداشت و بیشترین تراکم ماکروبنتوزها در زمستان (627 عدد در مترمربع) و کم ترین تراکم در بهار (357 عدد در مترمربع) بود. تاکسون نرمتنان با 1110 عدد در مترمربع فراوانترین تاکسون در سه فصل دو ایستگاه بود. الگوی پراکنش نرمتنان از منطقه بالای بین جزر و مدی به سمت منطقه پایین بین جزر و مدی افزایش داشت. پراکنش گروههای تاکسونی دیگر در بخش میانی منطقه بین جزر و مدی تراکم بیش تری را نشان دادند. ایستگاه های گلستان و بندر رستمی به لحاظ تراکم و ساختار اجتماعات ماکروبنتیک مشابه بوده که میتواند به دلیل نوع بستر قلوهسنگی و شیب بصری باشد. شاخص تنوع شانون در ایستگاه گلستان 0/6 و در بندر رستمی 0/7 محاسبه شد.
http://www.aejournal.ir/article_134603_a9e62e4bfa6bece9bf18906c00a15dcd.pdf
2021-04-21
457
464
10.22034/aej.2021.134603
ماکروبنتوز
بین جزر و مدی
ساحل سنگی
نرمتنان
خلیجفارس
بوشهر
نسرین
عزیزی
n.azizi@yahoo.com
1
گروه علوم دریایی، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
سید محمدرضا
فاطمی
reza_fatemi@hotmail.com
2
گروه علوم دریایی، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
علی رضا
ساری
alirezasari2003@gmail.com
3
گروه علوم جانوری، دانشکده زیست شناسی، پردیس علوم، دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
پروین
فرشچی
parvinfarshshi@gmail.com
4
گروه علوم دریایی، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
رضوان
موسوی ندوشن
mousavi.nadushan@gmail.com
5
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریا، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
اشجع اردلان، ا.، 1372. شناسایی و پراکنش دوکفهایهای مناطق بین جزر و مدی خلیج چابهار. دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال. 194 صفحه.
1
اشجع اردلان، ا.، 1389. بررسی پراکنش، شناسایی و تنوع زیستی نرم تنان، خرچنگهای پهن و خارپوستان مناطق بین جزر و مدی خلیج نای بند. طرح پژوهشی سازمان حفاظت محیط زیست. 263 صفحه.
2
بدری، س.، 1385. شناسایی و بررسی خارپوستان جزایر خارک، خارکو و خلیج نای بند. پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشگاه علوم دریایی خرمشهر. 120 صفحه.
3
عاربی، ا.؛ سواری، ا. و وزیری زاده، ا.، 1391. مطالعه بوم شناختی اجتماعات ماکروبنتیک رسوبات جزر و مدی دلوار (بوشهر). انتشارات موسسه ملی اقیانوسشناسی. صفحات 27 تا 36.
4
عزیزی، ن.، 1385. شناسایی و بررسی پراکنش دوکفهایهای جزایر خارک، خارکو و خلیج نای بند. پایاننامه کارشناسی ارشد، بیولوژی ماهیان دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال. 98 صفحه.
5
فقیه نژاد، ا.؛ پذیرا، ع. و امامی، س.م.، 1397. بررسی اکولوژیک شکم پایان منطقه بین جزر و مدی شهرستانهای دیر و کنگان. (مجله پژوهشهای جانوری) مجله زیستشناسی ایران. جلد 31، شماره 4، صفحات 433 تا 445.
6
مهردوست، م.؛ عوفی، ف. و بهزادی، ص.، 1396. طبقهبندی اکولوژیک زیستگاههای ساحلی- دریایی استان بوشهر (ناحیه مرکزی) بر اساس مدل استاندارد CMECS و با بهکارگیری سیستم اطلاعات جغرافیایی (GIS). فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 10، شماره 2، صفحات 293 تا 300.
7
ناطقی شاه رکنی، ا.؛ فاطمی، س.م.؛ نبوی، م.ب. و وثوقی، غ.ح.، 1395. پراکنش خارپوستان، توتیا خلیجفارس. مجله بیوسیستماتیک جانوری. شماره 11، صفحات 14 تا 27.
8
وزیری زاده، ا.، 1376. بررسی وضعیت ماکروفونا در منطقه بین جزر و مدی سواحل استان بوشهر. پایاننامه کارشناسی ارشد بیولوژی ماهیان دریا، دانشگاه شهید چمران اهواز. 138 صفحه.
9
وزیری زاده، ا.؛ محمدی، م. و فخری، ع.، 1391. ارزیابی بوم شناختی جوامع نرمتن در سواحل صخرهای استان بوشهر. انتشارات موسسه ملی اقیانوسشناسی. صفحات 55 تا 61.
10
ولایت زاده، م.؛ محب، ه. و حسینی، م.، 1391. بررسی تنوع شکم پایان سواحل شمالی خلیجفارس (استان بوشهر). فصلنامه محیطزیست جانوری. دوره 4، شماره 2، صفحات 15 تا 24.
11
Amini Yekta, F.; Kiabi, B.; Ashja Ardalan, A. and Shokri, M., 2013. Temporal variation in rocky intertidal gastropods of the Qeshm island in Persian Gulf. Journal of the Persian Gulf. Vol. 4, No. 13, pp: 9-18.
12
Clarke K.R. and Gorley R.N., 2001. PRIMER (Plymouth Routines in Multivariate Ecological Research). Vol. 5, Manual/Tutorial.
13
Khanam and Saher N.U., 2018. Zonal diversity and community structure of invertebrate macrofauna in Rocky intertidal area of Manora, Karachi, Pakistan. Pakistan Journal of Marine Sciences. Vol. 27, No. 2, pp: 93-104.
14
Kohan, A.; Badparast, Z. and Shokri, M., 2012. The Gastropod fauna along the Busher province intertidal zone of the Persian Gulf. Journal of the Persian Gulf (Marine Science). Vol. 3, pp: 33-42.
15
Leung, N.H., 2012. Spatial dispersion patterns of Planaxis sulcatus: patterns and consequences. University of Hong Kong. Pokfulam, Hong Kong SAR.
16
Lonhart, S.; Jeppesen, R.; Crooks, J.A. and Lorda, J., 2019. Shifts in the distribution and abundance of coastal marine species along the eastern Pacific Ocean during marine heatwaves from 2013 to 2018. Marine Biodiversity Records. Vol. 12, No. 13, pp: 1-15.
17
McLachlan, A. and Dorvlo, A., 2007). Global patterns in sandy beach macrobenthic communities: Biological Factors. Journal of coastal Research. Vol. 23, No. 5, pp: 1081-1087.
18
Moraitis, M.L.; Valavanis, V.D. and Karakassis, I., 2019. Modelling the effects of climate change on the distribution of benthic indicator species in the Eastern Mediterranean Sea. Science of The Total Environment. 667, pp: 16-24.
19
Naderloo, R.; Türkay, M. and Sari, A., 2013. Intertidal habitats and decapods (Crustacea) diversity of Qeshm Island, a biodiversity hotspot within the Persian Gulf. Marine Biodiversity. Vol. 43, No. 4, pp: 445-462.
20
Shannon, C.E. and Wiener, W., 1963. The Mathematical Theory of Communication. University of Illinois Press, Chicago, Illinois. 439 p.
21
Stevčić,; Pérez-Miguel, M.; Drake, P.; Tovar-Sánchez, A. and Cuesta, J., 2018. Macroinvertebrate communities on rocky shores: Impact due to human visitors. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 211, pp: 127-136.
22
Vazirizadeh, A. and Arebi, E., 2011. Study of Macrofaunal communities as indicators of sewage pollution in intertidal ecosystem: A case study in Busher (Iran). World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 3, No. 2, pp: 174-182.
23
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی ساختار و فراوانی زئوپلانکتون های انتقال یافته توسط آب توازن کشتی های ورودی به بندر بوشهر
گونه های مهاجم آبزی می توانند تهدیدی برای تنوع زیستی، صنایع دریایی و سلامت انسان باشند. در این تحقیق، نمونه برداری از 10 کشتی ورودی به بندر بوشهر از زمستان 1396 تا تابستان 1397 بر اساس روش استاندارد MEPC 173(58) در دو فصل سرد و گرم صورت گرفت. نمونه برداری زئوپلانکتون ها توسط پمپ کف کش از مخازن کشتی ها انجام شد. گونه های زئوپلانکتونی شناسایی شده در این تحقیق، متعلق به 7 شاخه، 11 رده، 15 راسته، 33 خانواده و 38 جنس و 48 گونه بودند. Arthropoda با 23 خانواده و 38 گونه، 57/25 درصد از گونه ها (بیش ترین تراکم)، Cliophora با دو خانواده و دو گونه 19/58 درصد، Ctenophora با دو خانواده و دو گونه، 12/22 درصد، Annelida با دو خانواده و دو گونه، 3/31 درصد، Cnidaria با یک خانواده و یک گونه 2/29 درصد، شاخه Chaetognata با یک خانواده و یک گونه 1/78 درصد و Chordata با دو خانواده و دو گونه 1/52 درصد از گونه ها (کم ترین تراکم) را به خود اختصاص دادند. بیش ترین و کم ترین درصد فراوانی نمونه های مورد مطالعه به ترتیب متعلق به گونه Leprotintinnus bubiyanicus از خانواده Tintinnidae (12/98 درصد) و گونه Oikopleura dioica از خانواده Oikopleuridae (0/25 درصد) بود. در بین گونه های شناسایی شده گونه مهاجمی شناسایی نشد که خود بیانگر آن است که خطری اکوسیستم ساحلی بندر بوشهر را به جهت انتقال گونه های مهاجم از طریق آب های منطقه شمالی اقیانوس هند تهدید نمی کند و روش تعویض آب توازن می تواند به عنوان یک روش مدیریتی مناسب در تعدیل خطر انتقال گونه های مهاجم به بندر بوشهر به کار گرفته شود.
http://www.aejournal.ir/article_134739_210bad013fb90cb7efa30eb31668fe38.pdf
2021-04-21
465
476
10.22034/aej.2021.134739
خلیج فارس
بندر بوشهر
زئوپلانکتون
آب توازن
گونه مهاجم
رضا
تولیان
gh.tolian@yahoo.com
1
گروه علوم محیط زیست، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
AUTHOR
نرگس
جوادزاده
nargesjavadzadeh@yahoo.com
2
گروه شیلات، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
علی محمد
صنعتی
sanati@pgu.ac.ir
3
گروه محیط زیست، پژوهشکده خلیج فارس، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ایران
AUTHOR
مریم
محمدی روزبهانی
mmohammadiroozbahani@yahoo.com
4
گروه علوم محیط زیست، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
AUTHOR
محسن
نوری نژاد
m.noorinezhad@gmail.com
5
پژوهشکده میگوی کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، ایران
AUTHOR
حیدری، م. ، 1381. زیست مندان و تنوع زیستی بوم سازگان کشند قرمز درسواحل استان هرمزگان. پایان نامه کارشناسی ارشد بیولوژی دریا، دانشگاه علوم دریایی و اقیانوسی خرمشهر. 156 صفحه.
1
سراجی، ف. و نادری، ح.، 1374. بررسی پلانکتون های آب های ساحلی بندرعباس. مرکز تحقیقات شیلات دریای عمان. 10 صفحه.
2
سراجی، ف.، 1379. تنوع و تراکم جمعیت پلانکتونی در مناطق شرق، مرکزی و غرب بندر عباس. مجله علمی شیلات ایران. سال 9، شماره 4، صفحات 15 تا 26.
3
سلامی اصل، س. و سواری، ا.، 1395. بررسی و شناسایی گروه های زئوپلانکتونی انتقال یافته توسط تخلیه آب توازن کشتی های ورودی به پایانه های بندر امام خمینی(ره). مجله بیولوژی دریا. سال 8، شماره 32، صفحات 55 تا 64.
4
سنجرانی، ا.؛ احمدی، م.ر.؛ کامرانی، ا.؛ ابراهیمی، م. و سنجرانی، م.، 1389. شناسایی زئوپلانکتون های سواحل ایرانی دریای عمان و تنگه هرمز و مقایسه آن ها در قبل و بعد از مانسون تابستانه با یکدیگر. مجله علمی آبزیان و شیلات. سال 1، شماره 1، صفحات 54 تا 43.
5
سنگپور، م.؛ عوفی، ف.؛ شاپوری، م. و رحیمی بشر، م.ر.، 1388. فیتوپلانکتون های موجود در مخزن دو نفتکش در اسکله نفتی بندر خارک ایران. مجله بیولوژی دریا. سال 1، شماره 4، صفحات 109 تا 120.
6
سواری، ا.، 1361 .بررسی پلانکتون های منطقه بوشهر-کنگان، خلیج فارس. سازمان تکثیر و توسعه آبزیان وزارت کشاورزی. 102 صفحه.
7
صادقی، م.، 1396. بررسی جوامع پلانکتونی آب های ساحلی شهر بندرعباس. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 74 صفحه.
8
ربانی ها ، م.؛ ایزدپناهی، غ.ر.؛ محسنی زاده، ف. و عوفی، ف.، 1391. تغییرات اجتماع پلانکتونها در آب های دور از ساحل جنوب استان بوشهر. اقیانوس شناسی. سال 3، شماره 11، صفحات 21 تا 31.
9
رضایی، ا.؛ کاظمیان، م.؛ عوفی، ف. و شاپوری، م،. بررسی تنوع زئوپلانکتون های منتقل شده توسط آب توازن در بندر تجاری شهید رجایی. مجله بیولوژی دریا. سال 2، شماره 1، صفحات 67 تا 70.
10
Abdel-Aziz, P.K.; Al-Tisan, I.A. and Jareed, M.A., 2003. Chlorophyl and Plankton of the Gulf Coastal Waters of Saudi Arabia bordering a Desalination Paper presented at IDA Conference, at Manama, Bahrain. pp: 291-302.
11
Al- Yamani. F. and Valeriy, A.S., 2006, Identification Guide for Protozoans from Kuwaits Coastal Planktonic Ciliates: Tintinnids. 109 p.
12
Al-Yamani, F.Y.; Skryabin, V.; Gubanova, A.; Khvorov, S. and Prusova, I., 2011. Marian zooplankton practical guid for the North western Persian Gulf. Kuwait Institute for Scienti"c Research, Kuwait. 399 p.
13
Bailey, S.A.; Deneau, M.G.; Jean, L.; Wiley, C.J.; Leung, B. and MacIsaac, H.J., 2011. Evaluating Efficacy of an Environmental Policy to Prevent Biological Invasions. Environmetal Science Technology. Vol. 45, pp: 2554-2561.
14
Baek, S.H.; Jung, S.W.; Jang, M.C.; Hyun, B. and Shin, K., 2012. Survival potential of autotrophic phytoplankton species collected from ballast water in international commercial ships. N.Z.J. Marrine Freshwater Research. Vol. 46, pp: 125-136.
15
Brewer, P.G., 1985. Chemical oceanography of the Persian Gulf. Progress in oceanography. Vol. 14, pp: 41-55.
16
Carlton, J.T., 1985. Transoceanic and interoceanic dispersal of coastal marine organisms: the biology of ballast water. Oceanography and Marine Biology Annual Review. Vol. 23, pp: 313-371.
17
Carlton, J.T. and Geller, J.B., 1993. Ecological roulette: the global transport of nonindigenous marine organisms. Science. Vol. 261, pp: 78-82.
18
Carter, C.M.; Ross, A.H.; Schiel, D.R.; Howard Williams, C. and Hayden, B., In situ microcosm experiment on the influence of nitrate and light on phytoplankton community composition. J. Exp. Marine Biology. Vol. 326, pp: 1-13.
19
Castro, M.C.; Fileman, T.W. and Hall-Spencer, J.M., 2017. Invasive species in the Northeastern and Southwestern Atlantic Ocean. A review. Marine Pollution Bulletin. Vol. 116, pp: 41-47.
20
Chandy, J.P.; Al-Tisan I.; Munshi, H.A. and El Reheim, H.A., 1991. Marine phytoplankton: A study on seasonal abundance and distribution in Al-JubailResearch Activities and Studies. Vol. 2, pp: 300-335.
21
Clesseri, L.S.; Greenberg, A.E. and Eaton, A.D., 2003. Standard methods for the examination of water and wastewater, New York, 20th ed. APHA, AWWA and WEF.
22
Cordell, J.; Kalata, O.; Pleus, A.; Newsom, A.; Strieck, K. and Gertsen, G., 2015. Effectiveness of ballast water exchange in protecting Puget Sound from invasive species. Washington Department of Fish and Wildlife. 55 p.
23
David, M.; Gollasch, S. and Penko, L., 2018. Identification of ballast water discharge profiles of a port to enable effective ballast water management and environmental studies. Journal of Sea Research. Vol. 133, pp: 60-72.
24
David, M.; Gollasch, S. and Penko, L., 2018. Identification of ballast water discharge profiles of a port to enable effective ballast water management and environmental studies. Journal of Sea Research. Vol. 133, pp: 60-72.
25
Desai, D.V.; Narale, D.; Khandeparker, L. and Anil, A.C., Potential ballast water transfer of organisms from the west to the east coast of India: Insights through on board sampling. J of Sea Research. Vol. 1, No. 133, pp: 88-99.
26
Drake, L.A.; Ruiz, G.M.; Galil, B.S.; Mullady, T.L.; Friedmann, D.O. and Dobbs, F.C., 2002. Microbial ecology of ballast water during a transoceanic voyage and the effects of open-ocean exchange. Marine Ecology Progress Series. Vol. 233, pp: 13-20.
27
Feng, D.; Chen, X.; Tian, W.; Qian, Q.; Shen, H.; Liao, D. and Lv, B., 2017. Pollution characteristics and ecological risk of heavy metals in ballast tank sediment. Environmental science and pollution research. Vol. 24, No.4, pp: 3951-3958.
28
Garrett, M.J.; Puchulutegui, C.; Selwood, A.I. and Wolny, J.L., 2014. Identification of the harmful dinoflagellate Vulcanodinium rugosum recovered from a ballast tank of a globally traveled ship in Port Tampa Bay, Florida, USA. Harmful Algae Journal. Vol. 39, pp: 202-209.
29
Ghotbeddin, N. and Mosavi Dehmordi, L., 2019. Investigation of physicochemical factors, chl-an and primary production in Mahshahr Creeks (Northwest Persian Gulf). Iranian Journal of Fisheries and Sciences. Vol. 18, No. 1, pp: 83-94.
30
Gollasch, S.; Lenz, J.; Dammer, M. and Andres, H.G., 2000. Survival of tropical ballast water organisms during a cruise from the Indian Ocean to the North Sea. Journalof Plankton Research. Vol. 22, pp: 923-937.
31
Hallegraeff, G.M. and Bolch, C.J., 1992. Transport of diatom and dinoflagellate resting spores in ships' ballast water: implications for plankton biogeography and aquaculture. Journal of Plankton Research. Vol. 14, No. 8, pp: 1067-1084.
32
Harris, R.; Wiebe, P.; Lenz, J.; Skjoldal, H.R. and Huntley, M.E., 2000.ICES Zooplankton Methodology Manual. Academic Press, London. 684 p.
33
Kuffner, B.I.; Andersson, A.J.; Jokiel, P.L.; Rodgers, K.S. and Mackenzie, F.T., 2008. Decreased abundance of crustose coralline algae due to ocean acidification. Nature Geoscience. Vol. 1, pp: 114-117.
34
Kozai, K.; Ishida, H.; Okamoto, K. and Fukuyo, Y., 2006. Feasibility study of ocean color remote sensing for detecting ballast Advances in space research. Vol. 37, pp: 787-792.
35
Kydd, J.; Rajakaruna, H.; Briski, E. and Bailey, S., 2018. Examination of a high resolution laser optical plankton counter and FlowCAM for measuring plankton concentration and size. Journal of Sea Research. Vol. 133, pp: 2-10.
36
Liu, T.K.; Chen, Y.S. and Su, P.H., 2019. Utilizing the Environmental and Vessel Factors to Assess the Risk of Non Indigenous Species Introduced by Ships' Ballast Water. In OCEANS 2019-Marseille (1-5). IEEE.Lock wood, G.L.; Hoopes, M. and Marchetti, M.P., 2008. Invasion Ecology. UK. 304 p.
37
Maglic, L.; Zec, D. and Francic, V., 2016. Ballast water sediment elemental analysis. Marine Pollution Bulletin. Vol. 103, No: 1-2, pp: 93-100.
38
McCollin, T.; Shanks, A.M. and Dunn, J., 2007. The efficiency of regional ballast water exchange: Changes in phytoplankton abundance and diversity. Harmful Algae. Vol. 6, No. 4, pp: 531-546.
39
Mirza, R.; Mohammadi, M.; Faghiri, I.; Abedi, E.; Fakhri, A.; Azimi, A. and Zahed, M.A., 2014. Source identification of polycyclic aromatic hydrocarbons (PAHs) in sediment samples from the northern part of the Persian Gulf, Iran. Environ Monit Assess, Vol. 186, No. 11, pp: 7387-7398.
40
Molina, V. and Drake, L.A., 2016. Efficacy of open-ocean ballast water exchange: a review. Management Biological Invasions. Vol. 7, pp: 375-388.
41
Nosrati-Ghods, N.; Ghadiri, M. and Früh, W.F., 2017. Management and environmental risk study of the physicochemical parameters of ballast water. 114, pp: 428-438.
42
Ogawa, H. and Tanoue, E., 2003. Dissolved organic matter in oceanic waters. Journal of Oceanography. Vol. 59, No. 2, pp: 129-147.
43
Raaymakers, S., 2002. The ballast water problem: global ecological, economic and human health impacts. In RECSO/IMO Joint Seminar on Tanker Ballast Water Management and Technologies. pp: 16-18.
44
Shi, Y., 2107. Reducing greenhouse gas emissions from international shipping: Is it time to consider market-based measures. Marine Policy Journal. Vol. 64, pp: 123-134.
45
Steichen, J.L. and Quigg, A., 2015.Assessing the viability of microorganisms in the ballast water of vessels transiting the North Atlantic Ocean. Marine Pollution Bulletin Journal. Vol. 101, pp: 258-266.
46
Taneez, M.; Hurel, C. and Marmier, N., 2015. Ex-situ evaluation of bauxite residues as amendment for trace elements stabilization in dredged sediment from Mediterranean Sea: a case study. Marine Pollution Bulletin. Vol. 98, No. 1-2, pp: 229-234.
47
Tjahjono, A.; Bambang, A.N. and Anggoro, S., 2017. Analysis of heavy metal content of Cd and Zn in ballast water tank of commercial vessels in Port of Tanjung Emas Semarang, Central Java Province. InIOP Conference Series: Earth and Environmental Science. Vol. 55, No. 1, p: 012024. IOP Publishing.
48
Zaleha, K. and Sathiya, B.M., 2006. Zooplankton in East Coast of Peninsular Malaysia. Journal of Sustainability Science and Management. Vol. 2, pp: 87-106.
49
Zvyagintsev, A.; Yu Ivin, V.V.; Kashin, I.A.; Orlova, T.Yu.; Selina, S.; Kasyan, V.V.; Korn, O.M.; Kornienko, E.S.; Kulikova, V.A.; Bezverbnaya, I.P.; Zvereva, L.V.; Radashevsky, V.I.; Belogurova, L.S.; Begun, A.A. and Gorodkov, A.N., 2009. Acclimation and Introduction of Hydrobionts Ships’ Ballast Water Organisms in the Port of Vladivostok, Russian Journalof Marine Biology. Vol. 35, No. 1, pp: 41-52.
50
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تغییرات گونه ای ماهیان تالاب شادگان در سه دهه اخیر
این تحقیق در تالاب بین المللی شادگان در فصول مختلف سال های 1375، 1387 و 1392 انجام گرفت. در مجموع بیش از 15 گونه ماهی از تالاب شادگان صید و زیست سنجی شدند . نمونه برداری فصلی در پنج ایستگاه از تالاب شادگان شامل دورق (ماهشهر)، رگبه، خروسی، سلمانه و عطیش انجام گرفت. جهت برآورد توده زنده از روش تهی سازی استفاده شده و براساس درصد خالی شدن وکاهش ذخیره ماهی در یک محل محصور استفاده شد. نتایج آماری اختلاف معنی دار را نشان داد ( P≤0.05). تغییر توده زنده گونه های ماهی در تالاب شادگان نسبت به سال 1375 و سال 1387 اتفاق افتاده است و گونه های بنی، حمری، کاراس، بیاح و اسبله افزایش یافته و گونه های شلج و کپور معمولی نیز کاهش یافتند. به طور کلی گونه های اسبله، بنی، حمری، کاراس، کپور، شلج و بیاح به ترتیب دارای بیش ترین توده زنده ماهی در تالاب بوده و بیش از 90% توده زنده گونه های تالاب شادگان را تشکیل می دهند. با توجه به افزایش گونه ای اسبله و کاراس و بیاح که دارای مقاومت بالای محیطی بوده و کاهش گونه های حساس تری چون شلج وشیربت به نظر می رسد تغییر شرایط فیزیکوشیمیایی تالاب به سمت استرس بیش تر محیطی باشد.
http://www.aejournal.ir/article_134953_4dd29b1b38f031486323006849b16267.pdf
2021-04-21
477
482
10.22034/aej.2021.134953
روش تهی سازی
توده زنده ماهی
تالاب شادگان
سید احمد رضا
هاشمی
seyedahmad91@gmail.com
1
مرکز تحقیقات شیلاتی آب های دور ، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، چابهار، ایران
LEAD_AUTHOR
مستوره
دوستدار
mastooreh.doustdar@gmail.com
2
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
انصاری، ه. و محمدی، غ.، 1379. مقایسه وضعیت صید و صیادی در تالاب شادگان. مرکز تحقیقات آبزی پروری جنوب کشور. 66 صفحه.
1
بهروزی راد، ب.، 1377. ارزش تالاب ها و نقش کنوانسیون رامسر در حفاظت از آن ها. فصلنامه محیط زیست. دوره 10، شماره 34، صفحات 2 تا 24.
2
دهقان مدیسه، س.، 1386. شناسایی مناطق تحت اثر در خوریات ماهشهر با استفاده از شاخص های اکولوژیک و بیولوژیک. رساله دکترای بیولوژی دریا. دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر. 145 صفحه.
3
خلیفه نیل ساز، م.؛ سبزعلیزاده، س.؛ اسماعیلی، ف.؛ انصاری، ه.؛ اسکندری، غ.؛ هاشمی، ا. و آلبوعبید، ص.، 1388. پایش تالاب شادگان. پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور. 150 صفحه.
4
عباسی، ک.؛ نوروزی، ه.؛ صیادرحیم، م.؛ زحمتکش، ی.؛ سبزی، م.؛ صداقت کیش، ا.؛ نیک سرشت، ک.؛ روحانی، ا.؛ سرپناه، ع.؛ رمضانی، ر.؛ صادقی نژاد، ا.؛ عبدلی، ا. و کاد. ب.، 1388. گزارش نهایی ماهیان بومی استان همدان. انتشارات مدیریت شیلات استان همدان. 226 صفحه.
5
غفله مرمضی، ج.، 1375. ماهی شناسی و ارزیابی ذخایر ماهی مطالعات جامع هور شادگان. مرکز تحقیقات شیلات استان خوزستان. 257 صفحه.
6
لطفی، ا.؛ غفاری، ه.؛ بهروزی راد، ب.؛ سواری، ا. و کاووسی، ک.، 1381. فعالیت های انسانی و اثرات آن ها بر بوم سازگان تالاب شادگان. طرح مدیریت زیست محیطی تالاب شادگان. گزارش شماره انتشارات مهندسان مشاور پندام. 74 صفحه.
7
ووتن، ر.، 1992. بوم شناسی ماهیان. ترجمه استکی، ع.، 1383. انتشارات موسسه تحقیقات شیلات ایران. 244 صفحه.
8
هاشمی، س.ا.، 1389. بررسی صید و توده زنده ماهیان تالاب شادگان. دومین همایش ملی تالاب های ایران. 14 صفحه.
9
هاشمی، س.ا. و اسکندری، م.، 1392. ارزیابی ذخیره و تولیدماهی تالاب شادگان در استان خوزستان. مجله پژوهش های جانوری (مجله زیست شناسی ایران). دوره 26، شماره 2، صفحات 218 تا 227.
10
Jenning, S.; Kasier, M. and Reynold, J., 2000. Marine Fisheries Ecology. Black well Science. 391 p.
11
King, M., 2007. Fisheries biology & assessment and management. Fishing news press. 340 p.
12
Kolding, J. and Zwieten, P.A.M. van., 2006. Improving productivity in tropical lakes and reservoirs. Challenge Program on Water and Food Aquatic Ecosystems and Fisheries Review Series 1. Theme 3 of CPWF, C/o World Fish Center, Cairo, Egypt. 139 p. ISBN: 977-17-3087-8.
13
Rakocinski, C.F.; Brown, S.S.; Gaston, G.R.; Heard, R.W. and Walker, W.W., 2000. Species abundance biomass responses by estuarine macrobenthos to sediment chemical contamination. Journalof Aquatic Ecosystem Stress and Recovery. Vol. 7, pp: 201-214.
14
Sparre, P. and Venema, C., 1998. Introduction to tropical fish stock assessment. Part1- Manual. 337 p. FAO Rome, Italy.
15
UNNEP. 2001. The Mesopotamian Marshlands: Demise of an ecosystem, Early warning and assessment report, UNEP/DEWA/TR.01-3 Rev.1, Division of Early Warning and Assessment, Nations Environmental Programme, Nairobi, Kenya.
16
Welcomme, R., 2001. Inland Fisheries Ecology and Management. Food and Agriculture Organization of United nation by Black Well Science. 345 p.
17
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی آب دریاچه براساس شاخص کیفیت آب های سطحی ایران (IRWQISC) به منظور توسعه پایدار (دریاچه نئور اردبیل)
این مطالعه با هدف ارزیابی کیفیت آب دریاچه نئور با استفاده از شاخص های کیفی آب و با توجه به وجود فعالیت های کشاورزی ، تفریحی و پرورش ماهی در اطراف این دریاچه و تعیین وضعیت آب، طراحی و اجرا گردید. با توجه به فعالیت های کشاورزی و دامداری اطراف دریاچه نئور، 5 ایستگاه نمونه برداری مشخص شده و نمونه برداری در فصول بهار و تابستان سال 1395 در دریاچه نئور انجام شد و پارامترهای مورد نیاز جهت محاسبه شاخص های کیفی آب طبق روش استاندارد اندازه گیری شد. با توجه به شاخص کیفی آب های سطحی ایران IRWQISC که با هدف استفاده از روش مناسب با شرایط طبیعی و مسائل و مشکلات منابع آب ایران تهیه شده است (IRWQISC) محاسبه و پارامترهای کلی فرم گرماپای، BOD ،COD، نیترات، اکسیژن محلول، هدایت الکتریکی، اکسیژن مورد نیاز شیمیایی، فسفات، کدورت، سختی کل، pH و آمونیوم تجزیه و تحلیل گردیدند. نتایج نشان داد که این شاخص برای تمام ایستگاه ها بین 50 تا 69 بوده و براساس شاخص IRWQISC در دو طبقه متوسط (55-45) و نسبتا خوب (70-55) قرار گرفت. به دلیل عبور دام در منطقه و برخی فعالیت های توریستی و کشاورزی در فصول گرم سال در اطراف دریاچه برای زیست ماهیان خصوصا ماهیان سردآبی مطلوب نمی باشد ولی برای مصارف کشاورزی و تفریحی مناسب است.
http://www.aejournal.ir/article_134992_72755a3124a82923741084f420847a6c.pdf
2021-04-21
483
488
10.22034/aej.2021.134992
شاخص کیفی آب های سطحی ایران
دریاچه نئور
فعالیت های کشاورزی و تفریحی
منیره
فئید
m_faeed@yahoo.com
1
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
LEAD_AUTHOR
هادی
بابائی
babaeiha@yahoo.com
2
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
حجت
خداپرست
sharifi_seyed@yahoo.com
3
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
ابراهیم پور، ص. و محمدزاده، ح.، 1392. ارزیابی و پهنه بندی کیفیت آب دریاچه زریوار با استفاده از شاخص های کیفی NSFWQI، OWQI، CWQI. مجله پژوهش های محیط زیست. دوره 4، شماره 7، صفحات 137 تا 146.
1
استاندارد ملی ایران437. 1376. اندازه گیری کلی فرم های مدفوعی آیین کار. موسسۀ استاندارد و تحقیقات صنعتی ایران. صفحات 1 تا 22.
2
امین پورشیانی، س.؛ محمدی، م.؛ خالدیان، م. و روشندل، ا.، 1395. ارزیابی کیفیت آب رودخانه گاز رودبار با استفاده از شاخص کیفی NSFWQI و شاخص آلودگی LIOU. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. دوره 8، شماره 27، صفحات 63 تا 74.
3
باقری، م.؛ فرزان، م.؛ کرمی، م. و منصوری، پ.، 1396. مقایسه پارامترهای کیفی آب رودخانه های صمصامی و دیناران با استانداردهای کیفی آب برای پرورش ماهی. مجله علمی شیلات ایران. دوره 4، شماره 26، صفحات 25 تا 35.
4
خلجی، م.؛ ابراهیمی، ع.؛ هاشمی نژاد، ه.؛ متقی، ا. و اسداله، س.، 1395. ارزیابی کیفیت آب دریاچه زاینده رود با استفاده از شاخص WQI. مجله علمی شیلات ایران. دوره 5، شماره 25، صفحات 51 تا 64.
5
سمرقندی،م.؛ ویسی، گ.؛ ابویی مهریزی، ا.؛ کاسب، پ. و دانایی، ع.، 1392. بررسی کیفیت آب دریاچه سدمخزنی (اکباتان شهرستان همدان) با بهره گیری از شاخص کیفی NSFWQI. مجله دانشگاه علوم پزشکی خراسان شمالی. دوره 5، شماره 1، صفحات 63 تا 69.
6
شکوهی، ر.؛ حسین زاده، ا.؛ روشنایی، ق.؛ علی پور، م. و حسین زاده، س.، 1390. بررسی کیفیت آب دریاچه سد آیدغموش با استفاده از شاخص کیفیت آب (NSFWQI) و بیلان مواد مغذی. مجله سلامت و محیط. دوره 4، شماره 4، صفحات 429 تا 450.
7
علیزاده اوصالو، ژ.؛ محسن پورآذری، ع.؛ نکوئی فرد، ع.؛ صیدگر، م.؛ یحیی زاده، م. و علیزاده کلشانی، م.، بررسی مقطعی روند تغییرات کیفی آب دریاچه پشت سد ارس. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. دوره 6، شماره 23، صفحات 5 تا 14.
8
فئید، م.؛ بابایی، ه. و عابدینی، ع.، 1394. بررسی فاکتورهای میکروبیولوژی و فیزیکوشیمیایی در تالاب انزلی. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. دوره 7، شماره 25، صفحات 45 تا 54.
9
فئید، م.؛ خداپرست، ح.؛ مهرابی، م. و میرهاشمی نسب، س.ف.، 1398. ارزیابی کیفیت آب دریاچه نئور (پارامترهای میکروبی و فیزیکوشیمیایی) به منظور آبزی پروری. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 11، شماره 2، صفحات 353 تا 360.
10
ملوندی، ح.؛ مغنی زاده، ر. و عبدلی، ا.، 1397. ارزیابی کیفیت آب رودخانه دهبار با استفاده از شاخص های زیستی. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 10، شماره 1، صفحات 381 تا 390.
11
میرمشتاقی، س.؛ امیرنژاد، ر. و خالدین، م.، 1390. بررسی کیفیت رودخانه سفیدرود با استفاده از شاخص NSFWQI و QWQI . فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. دوره 3، شماره 9، صفحات 23 تا 34.
12
نصراله زاده ساروی، ح.، پرافکنده، ف.؛ فضلی، ح.؛ میرزایی، ر.؛ حسین پور، ح.؛ افرایی، م.ع.؛ نصراله تبار، ع.؛ مخلوق، آ. و واحدی، ن.، 1395. مطالعه خصوصیات فیزیکوشیمیایی آب در دریاچه پشت سد آزاد سنندج به منظور فعالیت های شیلاتی. مجله علمی شیلات ایران. دوره 25، شماره 4، صفحات 143 تا 157.
13
Abbasi, T. and Abbasi, S.A., 2012. Water Quality Indices. Elsevier, Oxford, UK. APHA, AWWA, WEF, 2005.Standard Methods for the Examination of Water andWastewater, 21st ed. American Public Health Association, Washington, DC.
14
Ahip, M.V. and Puttaiah, E.T., 2006. Ecological characteristics of Vrishabhavathy River in Bangalore(India). Environmental geology. Vol. 49, No. 8, pp: 1217-1222.
15
Alobaidy, A.H.M.J.; Abid, H.S. and Maulood, B.K., 2010. Application of water quality index for assessment of Dokan Lake Ecosystem. Kurdistan Region, Iraq, Water Resource and Protection. pp: 290-293.
16
APHA (American Public Health Association). 2005. American Water Works Association (AWWA) & Water Environment Federation (WEF). Standard methods for the examination of water and wastewater. pp: 1-22.
17
Blocksom, K.A.; Kurtenbach, J.P. and Klemm, D.J., 2002. Development and evaluation of the lake macroinvertebrate integrity index (LMII) for New Jersey lakes and reservoirs. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 77, pp: 311-333.
18
Eaton, A.D. and Franson, M.A., 2005. Standard Methods for the Examination of Water and Wastewater. Washington, DC: American Public Health Association. pp: 1-18.
19
Kazi, T.G.; Arain, M.B.; Jamali, M.K.; Jalbani, N.; Afridi, I.; Sarfraz, R.A.; Baig, J.A. and Shah, A.Q., 2009. Assessment of water quality of polluted lake using multivariate statistical techniques: A case study. Ecotoxicology and Environmental Safety Journal. Vol. 72, pp: 301-309.
20
Li, X.; Manman, C. and Anderson, B.C., 2009. Design and performance of a water quality treatment wetland in a public park. Vol. 36, No. 1, pp: 291-297.
21
Parham, H.; Jafarzadeh, N.; Dehghan, S. and Kian Ersi, F., 2007. Cjanging in nitrogen and phosphorous concentration and some physicochemical parameters to budget determination of Karkheh reservoir. Shahid Chamran University Journal of Science, new series (17section B). pp: 25-117.
22
Ramirez, N.F. and Solano, F., 2004.Physicochemical water quality indices-A Comparative Review. Revista Bifua Journal. Vol. 27, pp: 437-441.
23
Samadi J., 2016. Survey of Spatial-Temporal Impact of Quantitative and Qualitative of Land Use Wastewaters on Choghakhor Wetland Pollution Using IRWQI Index and Statistical Methods. Iranian Water Resour Res (IR-WRR). Vol. 11, No. 3, pp: 159-171.
24
Tank, S.K. and Chippa, R.C., 2013.Analysis of water quality of Halena Block in Bharatpur Area. International Journal of Scientific and Research Publications.Vol. 3, No. 3, pp: 124-210.
25
WHO (World Health Organization). 2004. Guidelines for drinking water quality, 3rd Edition, World Health Organization (WHO) Geneva.10.
26
ORIGINAL_ARTICLE
طراحی سیستم پشتیبان تصمیمگیری در پیشبینی سطح سواد تنوعزیستی شهروندان استان تهران
امروزه محیطزیست در سطوح جهانی و ملی در معرض تهدیدهای جدی قرار دارد که این تهدیدها توسط انسان ایجاد شده است. عدم آگاهی از مسائل زیستمحیطی، موجب بروز مشکلات عدیده و افزایش اثرات منفی در محیط شده است. بر همین اساس پژوهش حاضر با هدف طراحی یک سیستم پشتیبان تصمیمگیری جهت پیشبینی سطح سواد تنوع زیستی شهروندان استان به منظور تصمیمگیری و برنامهریزیهای آتی جهت آموزش افراد انجام گرفت. جامعه آماری در پژوهش حاضر از افراد 6 سال به بالا در استان تهران انتخاب شد بر همین اساس حجم نمونهبرداری مطابق با فرمول کوکران 384 نفر محاسبه گردید. مدل تنوعزیستی طراحی شده توسط شبکه عصبی با دو لایه پنهان و 19 نورون و تابع انتقال تانژانت سیگموئید خطی و با ضریب تبیین 0/89 قابلیت بسیار خوبی در پیشبینی میزان آگاهی از تنوعزیستی شهروندان را نمایش داد. مهمترین متغیرهای اثرگذار در این مدل نوع فعالیت و تحصیلات دانشگاهی افراد بود. نوع فعالیت بر این اساس با میزان آگاهی از تنوع زیستی رابطه عکس دارد. هم چنین سطح تحصیلات دانشگاهی ارتباط بسیار مستقیم با میزان آگاهی از تنوع زیستی افراد دارد، با وجود این که اکثر افراد بدون تحصیلات دانشگاهی به سوالات پاسخ دادند و میانگین پاسخهای آنها دو سوال بود ولیکن مدل طراحی شده نشان داد هرچه میزان تحصیلات دانشگاهی افزایش یابد تعداد پاسخهای صحیح توسط افراد نیز افزایش خواهد داشت. در نهایت سیستم پشتیبان تصمیمگیری به کمک نرم افزار متلب جهت استفاده در سایر استانها طراحی شد.
http://www.aejournal.ir/article_135002_2417065c4ffce5a618698debd12cc223.pdf
2021-04-21
489
498
10.22034/aej.2021.135002
تنوع زیستی
آگاهی زیستمحیطی
سیستم پشتیبان تصمیمگیری
مدلسازی شبکه عصبی مصنوعی
علی
جهانی
ajahani@ut.ac.ir
1
گروه ارزیابی و مخاطرات محیط زیست، پژوهشکده محیط زیست و توسعه پایدار و دانشکده محیطزیست، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
زهرا
مصفایی
mosaffaie@coe.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده محیطزیست، کرج، ایران
AUTHOR
مریم
صفاریها
m_saffariha@ut.ac.ir
3
گروه مرتع و آبخیزداری ، دانشکدۀ منابع طبیعی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
آقاجانی، ح.؛ مروی مهاجر، م.ر.؛ جهانی، ع.؛ آصف، م.ر.؛ شیروانی، ا. و آذریان، م. 1392. بررسی فاکتورهای مؤثر رویشگاهی بر فراوانی قارچهای ماکروسکوپی چوبزی و تحلیل حساسیت با استفاده از شبکه عصبی مصنوعی (مطالعه موردی: جنگلهای خیرود نوشهر). فصلنامه تحقیقات جنگل و صنوبر ایران. دوره 21، شماره 4، صفحات 617 تا 628.
1
پورمعصوم، ب.؛ فیاض، ا. و بازرگان، س.، 1395. شکلگیری سواد زیستمحیطی کودکان بر اساس برنامهدرسی راهبردی، برنامهریزی چندبعدی و بسته یادگیری چندرسانهای. فصلنامه تعلیم و تربیت. دوره 33 ، شماره 1، صفحات 9 تا 32.
2
جهانی، ع.؛ فقهی، ج.؛ مخدوم، م. و امید، م.، 1395. سیستمهای پشتیبان تصمیمگیری محیطزیستی (EDSSs): بررسی مفاهیم، تحولات و چالشها از گذشته تاکنون. پژوهشهای محیط زیست. دوره 7، شماره 13، صفحات 175 تا 188.
3
جهانی، ع. و محمدی فاضل، ا.، 1395. مدلسازی کیفیت زیباشناختی منظر در فضای سبز شهری با استفاده از شبکهعصبی مصنوعی. محیطزیست طبیعی، منابعطبیعی ایران. دوره 69، شماره 4، صفحات 951 تا 963.
4
جهانی، ع.، 1398. ارزیابی ریسک اجرای طرح جنگلداری بر تغییرات تراکم مکانی پوشش گیاهی زیر آشکوب جنگل با رهیافت مدلسازی شبکهعصبی مصنوعی. نشریه تحلیل فضایی مخاطرات محیطی. دوره 6، شماره 2، صفحات 21 تا 34.
5
جهانی، ع.؛ خالقپناه، ر.؛ گشتاسب، ح. و خراسانی، ن.ا.، 1398. ارزیابی تقاضای تفرجی کاربران پارکهای شهری تهران با استفاده از مدل شبکه عصبی مصنوعی. دوفصلنامه مطالعات اجتماعی گردشگری. دوره 7، شماره 14، صفحات 339 تا 362.
6
شکوری اصل، ش. و رفیعیان، م.، 1394. کاربرد سیستمهای پشتیبان تصمیمگیری فضایی در برنامهریزی شهری. مجله هویت شهر. دوره 24، شماره 9، صفحات 35 تا 42.
7
صالحی، ص. و امامقلی، ل.، 1391. مطالعه تجربی رابطه آگاهی و رفتارهای زیستمحیطی (مطالعه مناطق شهری و روستایی شهرستان سنندج). مسائل اجتماعی ایران (دانشگاه خوارزمی). دوره 3، شماره 1، صفحات 121 تا 147.
8
عبداللهی، ع.ا. و صادقی، ح.ر.، 1391. نیازسنجی آموزش زیست محیطی دانشآموزان پسر مقطع ابتدایی شهر اصفهان. فصلنامه علمی، ترویجی آموزش محیطزیست و توسعه پایدار. دوره 1، شماره 1، صفحات 9 تا 16.
9
عزیزی، م.؛ مهدیزاده، ح.ف. و شبیری، م.، 1391. بررسی وضعیت رویکرد محیطزیستی زنان خانهدار شهر ایلام. فصلنامه انسان و محیطزیست. دوره 22، صفحات 77 تا 87.
10
علویمقدم، م. و ساداتدلبری، ا.، 1388. ارزیابی میزان آگاهی دانشجویان مقطع کارشناسی از موضوع مدیریت مواد زاید جامد در محیطزیست. فناوری آموزش (فناوری و آموزش). دوره 3، شماره 4، صفحات 309 تا 314.
11
علویمقدم، م.؛ مکنون، ر.؛ بابازاده ن.ع.؛ خان محمدی ه.م. و افتخاری، ی.، 1391. ارزیابی آگاهی، نگرش و عملکرد دانشجویان دانشگاه صنعتی امیرکبیر در خصوص محیطزیست. فصلنامه علوم و تکنولوژی محیطزیست. دوره 14، شماره 4، صفحات 147 تا 154.
12
مرزبان، آ.؛ برزگران، م.؛ حمایتخواه، م.؛ ایاسی، م.؛ دلاوری، س.؛ سبزهای، م.ت. و رحمانیان، و.، 1398. ارزیابی سطح آگاهی و رفتارهای زیستمحیطی شهروندان (جمعیت شهری یزد). مجله سلامت و محیطزیست. دوره 12، شماره 1، صفحات 17 تا
13
نظمی، ر.، 1392. بررسی تأثیر برنامهریزی چندبعدی بر سواد زیستمحیطی کودکان پیشدبستان تهران در سال تحصیلی 93-92. پایان نامه کارشناسی ارشد رشته برنامهریزی درسی، دانشگاه الزهرا.
14
نیرو، م.، 1391. مقایسه اثربخشی آموزش محیطزیست براساس نظریه هوشهای چندگانه گاردنر و شیوه سنتی. مجله پژوهش های ترویج و آموزش کشاروزی. دوره 5، شماره 11، صفحات 11 تا 20.
15
ویسی، ه. و مجدالدین، ا.، 1393. بررسی ساز و کارها و زمینههای مشارکت عمومی در حفاظت از محیطزیست. نشریه محیطزیست طبیعی. دوره 63 شماره 1، صفحات 93 تا 107.
16
Adetola, B.O. and Adetoro, A.O., 2014. Threats to biodiversity conservation in Cross River National Park, Nigeria. International Journal of Conservation Science. Vol. 5, No. 4.
17
Ahmad, I.; Azhar, S. and Lukauskis, P., 2004. Development of a decision support system using data warehousing to assist builders/developers in site selection. Automation in Construction. Vol. 13, No. 4, pp: 525-542.
18
Akomolafe, O., 2011. Impact of personal factors on environmental education in tertiary institutions in Ekiti State, Nigeria. International Journal for Cross-Disciplinary Subjects in Education. Vol. 1, No. 1, pp: 559-564.
19
Bloom, J.W. and Trumbell, D., 2007. Evaluation of Environmental Attitudes: Analysis and Results of a Scale Applied to University Student. Journal of University of Zaragoza. Vol. 2, pp: 988-1009.
20
Elmahdi, A. and McFarlane, D., 2009. A decision support system for a groundwater system Case Study: Gnangara Sustainability Strategy Western Australia. In 18th World IMACS Congress and MODSIM09 International Congress on Modelling and Simulation. Modelling and Simulation Society of Australia and New Zealand and International Association for Mathematics and Computers in Simulation. pp: 2377-2383.
21
Guariso, G. and Werthner, H., 1989. Environmental Decision Support Systems. Ellis Horwood-Wiley, New York. 864 p.
22
Jacoby, W.; Wallner, H. and Mertz, D.F., 2003. Students' field research extends knowledge of origin of a UNESCO World Heritage site in Germany. Eos, Transactions American Geophysical Union. Vol. 84, No. 39, pp: 393-394.
23
Jahani, A.; Feghhi, J.; Makhdoum. F.M. and Omid, M., 2015. Optimized forest degradation model (OFDM): an environmental decision support system for environmental impact assessment using an artificial neural network. Environmental Planning and management. Vol. 59, No. 2, pp: 222-244.
24
Jahani, A., 2018. Forest landscape aesthic quality model (FLAQM): A comparative study on landscape modelling using regression analysis and artificial neural networks. Journal of Forest Science. Vol. 65, No. 2, pp: 61-69.
25
Jahani, A., 2019. Sycamore failure hazard classification model (SFHCM): an environmental decision support system (EDSS) in urban green spaces. International Journal of Environmental Science and Technology. Vol. 16, No. 2, pp: 955-964.
26
Kalantary, S.; Jahani, A.; Pourbabaki, R. and Beigzadeh, Z., 2019. Application of ANN modeling techniques in the prediction of the diameter of PCL/gelatin nanofibers in environmental and medical studies. Royal Society of Chemistry. Vol. 9, pp: 24858-24874.
27
Kaplowitz, MD. and Levine R., 2005. How environmental knowledge measures up at a big ten universities. Environmental Education Research. Vol. 11, No. 2, pp: 143-160.
28
Kollmuss, A. and Agyeman, J., 2002. Mind the gap: Why do people act environmentally and what are the barriers to pro-environmental behavior? Environmental Education Vol. 8, No. 3, pp: 239-260.
29
Krnel, D. and Naglič, S., 2009. Environmental literacy comparison between eco-schools and ordinary schools in Slovenia. Science Education International. 20, No. 1/2, pp: 5-24.
30
Lindemann, P. and Bose, E., 2007. Species Richness, Structural Diversity and Species Composition in Meadows Created by Visitors of a Botanical Garden in Switzerland. Landscape and Urban Planning. Vol. 79, pp: 298-307.
31
Mosaffaei, Z.; Jahani, A.; Zare Chahouki, M.A.; Goshtasb, H.; Etemad, V. and Saffariha, M., 2020. Soil texture and plant degradation predictive model (STPDPM) in national parks using artificial neural network (ANN). Modeling Earth Systems and Environment. Vol. 6, No. 2: pp: 715-729.
32
Palmer, J.A., 2017. Environmental Education in the 21st Translated by: Khoshiddoost, A.M. Organization of study and compilation of humanities textbooks of universities, 6nd. 399 p.
33
Rizzoli, A.E. and Young, W.J., 1997. Delivering environmental decision support systems: software tools and techniques. Environmental Modelling & Software. Vol. 12, No. 2-3, pp: 237-249.
34
Shim, J.P.; Warkentin, M.; Courtney, J.F.; Power, D.J., Sharda, R. and Carlsson, C., 2002. Past, present, and future of decision support technology. Decision support systems. Vol. 33, No. 2, pp: 111-126.
35
Simmons, H.D.; Spell, R.; Martinsek, E.R.; Evans, K.; Madigan, D.R. and LaSalle, R.M., 2010.Knowledge discovery system with user interactive analysis view for analyzing and generating relationships. Accenture Global Services GmbH, U.S. Patent. Vol. 7, pp: 765-176.
36
Varisli, T., 2009. Evaluating eighth grade students’ environmental literacy: The role of socio-demographic variables. Master’s thesis, The Department of Elementary Science and Mathematics Education, Middle East Technical University, Turkey.
37
Yilmaz, O.; Boone, W. and Andersen, H., 2004. Views of Elementary and Middle School Turkish Students Toward Environmental Issues. International Journal of Science Education. Vol. 26, No. 12, pp: 1527-1546.
38
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی و مقایسه فعالیت آنتی اکسیدانی عصارۀ متانولی ماکروجلبک قرمز Gracilaria corticata از سواحل قشم و بندرلنگه
جلبک های قرمز از مهم ترین گونه های موجود در سواحل خلیج فارس می باشند. در بررسی حاضر، نمونه برداری از ماکروجلبک قرمز جنس Gracilaria، از سواحل جزیره قشم و بندر لنگه جهت ارزیابی فعالیت آنتی اکسیدانی عصارۀ قطبی ماکروجلبک قرمز Gracilaria corticata در سواحل جنوبی جزیره قشم انجام گردید. شناسایی نمونه های ماکروجلبک جمع آوری شده در سطح گونه، به روش های ریخت شناسی انجام شد. عصاره گیری از نمونه های جمع آوری شده با استفاده از حلال قطبی متانول صورت گرفت. فعالیت آنتی اکسیدانی عصاره های ماکروجلبک Gracilaria corticata به روش احیا رادیکال آزاد (DPPH) انجام شد. نتایج نشان دادند که غلظت بازدارنده (IC50) عصاره متانولی نمونه های جلبک جمع آوری شده از بندرلنگه و قشم، به ترتیب در غلظت های µg/ml 5/261 و µg/ml 4/315، معادل 50 درصد رادیکال های آزاد DPPH را مهار نمودند. در این بررسی، عصاره ماکروجلبک Gracilaria corticata جمع آوری شده از سواحل بندر لنگه در مقایسه با سواحل قشم، فعالیت آنتی اکسیدانی بیش تری نشان دادند. هم چنین عصاره ماکروجلبکی Gracilaria corticata استخراج شده با حلال قطبی متانول متعلق به سواحل بندر لنگه، در مقایسه با عصاره ماکروجلبکی متعلق به سواحل قشم، از جنبه مهار رادیکال های آزاد DPPH و با قدرت احیا کنندگی، فعالیت آنتی اکسیدانی بیش تری نشان دادند. بر اساس نتایج حاصل از این بررسی، می توان نتیجه گیری کرد که جمعیت های Gracilaria corticata موجود در سواحل بندرلنگه نسبت به سواحل قشم از نظر فعالیت آنتی اکسیدانی برای کاربردهای غذایی برتری دارد.
http://www.aejournal.ir/article_135030_72b0a475a545274c9c92086453394e34.pdf
2021-04-21
499
504
10.22034/aej.2021.135030
corticata Gracilaria
جلبک قرمز
آنتی اکسیدان
عصارۀ متانولی
مریم
طلا
m_tala2002@yahoo.com
1
گروه شیلات، واحد قشم، دانشگاه آزاد اسلامی، قشم، ایران
LEAD_AUTHOR
سعید
تمدنی جهرمی
stamadoni@yahoo.com
2
پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، ترویج و آموزش کشاورزی ، بندر عباس، ایران
AUTHOR
منصور
آزاد
azadm2000@yahoo.com
3
گروه شیلات، واحد قشم، دانشگاه آزاد اسلامی، قشم، ایران
AUTHOR
حیدری، م،؛ قطب الدین، ن. و پذیر، م.، 1396. بررسی تأثیر عصاره جلبک دریایی سارگاسوم آنگوستیفلوم بر روی شاخص های رشد و بازماندگی میگوی سفید غربی (Litopenaeus vannamei). فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 2، صفحات 223 تا 230.
1
ربانی ها، م.؛ ایزدپناهی، غ.؛ محسنی زاده، ف. و عوفی، ف.، 1391. تغییرات اجتماع پلانکتون ها در آب های دور از ساحل جنوب استان، بوشهر. نشریه اقیانوس شناسی. دوره 3، شماره 11، صفحات 21 تا 31.
2
ربیعی، ر. و کیانمهر، ه.، 1369. مطالعه اکولوژیک گیاهان دریایی جزیره قشم. کنگره علوم و فنون دریایی- نور.
3
ربیعی، ر. و سهرابی پور، ج.، 1376. گزارش نهایی طرح بررسی اکولوژیک رویشهای جلبکی سواحل جزیره قشم. انتشارات مرکز تحقیقات منابع طبیعی هرمزگان.
4
ربیعی، ر. و سهرابی پور، ج.، 1381. گزارش نهایی طرح مطالعه اکولوژیک جلبک قرمز Gelidiella acerosa در سواحل استان هرمزگان. انتشارات مرکز تحقیقات منابع طبیعی هرمزگان.
5
سهرابی پور، ج.، 1376. گزارش نهایی طرح جمع آوری و شناسایی فلور جلبکی سواحل خلیج فارس و دریای عمان (استان هرمزگان). انتشارات مرکز تحقیقات منابع طبیعی هرمزگان.
6
سهرابی پور، ج. و سرطاوی، ک.، 1380. گزارش نهایی طرح فلورجلبکی استان بوشهر. مرکز تحقیقات منابع طبیعی و امور دام استان بوشهر.
7
فرامرزی، م. و فروتن فر، م.، 1389. بیوتکنولوژی ریزجلبک ها. انتشارات دانشگاه علوم پزشکی ایران. 276 صفحه.
8
قرنجیک، ب. و روحانی قادیکلایی، ک.، اطلس جلبک های دریایی سواحل خلیج فارس و دریای عمان. انتشارات موسسه تحقیقات شیلات ایران. 170 صفحه.
9
حیدری، م.؛ ذوالقرنین، ح.؛ سخایی، ن.؛ میرزایی، ع. و موحدی نیا، ع.، 1394. مقایسه قدرت ضدرادیکالی و ضدباکتریایی ماکروجلبک ها در سواحل شمالی خلیج فارس. مجله علمی شیلات ایران. دوره 24، شماره 2، صفحات 53 تا 64.
10
علویان، ز.؛ سواری، ا. و فرمحمدی، س.، ۱۳۸۱. بررسی فراوانی و پراکنش جلبکهای ماکروسکوپی Seaweeds سواحل کیش در ارتباط با آلودگیهای زیست محیطی. مجله علمی شیلات ایران. دوره 11، شماره 3، صفحات 63 تا 90.
11
قرنجیک، ب.، 1378. بررسی تغییرات تراکم، بسامد و بیوماس سه گونه مهم از جلبک قهوه ای Sargassum glausencens , Cystoseira indica ,Nizimuddinia zanardinii در سواحل استان سیستان و بلوچستان. مجله علمی شیلات ایران. دوره 11، شماره 3، صفحات 91 تا 102.
12
گل پور، آ.؛ حسینی، س.ع.؛ هدایتی، س.ع.ا. و جافرنوده، ع.، 1399. اثر عصاره جلبک پادینا (Padina astraulis) بر شاخص رشد ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 12، شماره 2، صفحات 203 تا 208.
13
Bambang, B.S; Kumalaningsih, S. and Hardoko, W., 2013. Polyphenol Content and Antioxidant Activities of Crude Extract from Brown Algae by Various Solvents, Journal of Life Science and Biomedicine. Vol. 3, pp: 439-443.
14
Budhiyanti, S.A; Raharjo, S; Djagal, W. and Iwan, Y.B., 2011. Free radical scavenging, metal chelating and singlet oxygen quenching activity of fractionated brown seaweed Sargassum hystrix Journal of Biological Sciences. Vol. 11, pp: 288-298.
15
Chouhury, S; Sree, A; Mukherjee, S.C; Pattnik, P. and Bapuji, M., 2005. In Vitro Antibacterial Activity of Extracts of Selected Marine Algae and Mangroves against Fish Pathogens. Asian Fisheries Science. Vo. 18, pp: 285-294.
16
Cornish, M.L. and Garbary, D.J., 2000. Antioxidants from macroalgae: potential applications in human health and nutrition. Algae. Vol. 25, pp: 155-171.
17
Dawes, C.J., 1997. Marine botany. John wiley and sons. New York. 480 p.
18
Galal, H.R.M; Salem, W.M. and El-Deen, N., 2011. Biological control of some pathogenic fungi using Marine Algae Extracts. Research Journal of Microbiology. Vol. 6, No. 8, pp: 645-657.
19
Ganesan, P.; Kumar, C.S. and Bhaskar, N., 2008. Antioxidant properties of methanol extract and its solvent fractions obtained from selected Indian red seaweeds. Bioresour Technology. Vol. 99, pp: 2717-2723
20
Ismail, G.A; Gheda, S.F; Abo-Sahdy, A.M. and Abdel Karim, O.H., 2019. In vitro potential activity of some seaweeds as antioxidants and inhibitors of diabetic enzymes. Food Science and Technology. Epub. https://doi.org/10.1590 /fst.15619
21
Kolanjinathan, K.; Ganesh, P. and Saranraj, P., 2014. Pharmacological Importance of Seaweeds: A Review. World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 6, pp: 01-15.
22
Kuda, T.; Tsunekawa, M.; Goto, H. and Araki, Y., 2005. Antioxidant properties of four edible algae harvested in the Noto Peninsula, Japan. Journal of Food Composition. Vol. 18, pp: 625-633.
23
Kokilam, G.; Vasuki, S. and Sajitha, N., 2013. Biochemical composition, alginic acid yield and antioxidant activity of brown seaweeds from Mandapam region, Gulf of Mannar. Journal of Applied Pharmaceutical Science. Vol. 3, pp:
24
Namvar, F.; Rosfarizan, M.; Baharara, J.; Fargahi, F. and Sulaiman, R., 2013. Antioxidant, Antiproliferative, and Antiangiogenesis Effects of Polyphenol-Rich Seaweed (Sargassum muticum), BioMed Research International. 9 p.
25
Oyaizu, M., 1986. Studies on products of browning reactions: antioxidative activities of browning reaction prepared from glucosamine. Japanese Society of Nutrition and Dietetics. 44, pp: 307-315.
26
Sadati, N.; Khanavi, M.; Mahrokh, A.; Nabavi, S.M.B.; Sohrabipour, J. and Hadjiakhoondi A., 2011. Comparison of Antioxidant Activity and Total Phenolic Contents of some Persian Gulf Marine Algae. Journal of Medicinal Plants. Vol. 10, pp: 73-79.
27
Sheu, M.J.; Huang, G.J.; Wu, C.H.; Chen, J.S.; Chang, H.Y.; Chang, S.J. and Chung, J.G., 2008. Ethanol extract of Dunaliella salina induces cell cycle arrest and apoptosis in A549 Human non-small cell lung cancer. In vivo. Vol. 22, pp: 369-378.
28
Shaklar, G. and Schwarts, J., 1988. Tumor necrosis factor in experimental cancer regression with alphatocopherol, beta-caroten, canthaxanthin and algae extract. European Journal of Cancer and Clinical Oncology. Vol. 24, pp: 839-850.
29
Stryker, W.S.; Stampfer, M.J.; Stein, E.A.; Kaplan, L.; Louis, T.A.; Sober, A. and Wellett, W.C., 1990. Diet, plasma levels of beta-carotene and alphatocopherol, and risk of malignant melanoma. American Journal of Epidemiology. Vol. 131, pp: 597-611.
30
Sun, Y.; Wang, H. and Guo, G., 2016. Isolation, purification, and identification of antialgal substances in green alga Ulva prolifera for antialgal activity against the common harmful red tide microalgae. Environmental Science and Pollution Research. Vol. 23, pp: 1449-1459.
31
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی میزان فلزات سنگین سرب و جیوه در عسل استانهای آذربایجان شرقی و اردبیل
یکی از چالش های زیست محیطی در دهه گذشته، حضور فلزات سنگین در آب، هوا، خاک و حتی زنجیره غذایی انسان است. عسل نیز به عنوان یکی از فراورده های غذایی از این نوع آلودگی ها در امان نیست. هدف مطالعه حاضر، سنجش فلزات سنگین سرب و جیوه در عسل های عرضه شده در بازار در دو استان آذربایجان شرقی و اردبیل بود. در این مطالعه تعداد 50 نمونه عسل در اردیبهشت ماه 1394 از دو استان آذربایجان شرقی و اردبیل به صورت تصادفی از عسل های عرضه شده در بازار جمع آوری و جداسازی سرب و جیوه توسط دستگاه جذب اتمی انجام شد. مقدار سرب و جیوه یافت شده در همه نمونه ها زیر حد استاندارد جهانی (حد مجاز استاندارد جهانی برای سرب در عسل 1 ppm و برای جیوه در عسل 0/05 ppm است) بود و مقدار سرب درنمونه عسل های آذربایجان شرقی بیش تر از اردبیل و مقدار جیوه درنمونه عسل های اردبیل بیش تر از آذربایجان شرقی تشخیص داده شد که البته این تفاوت ها در مورد هر دو فلز سنگین، معنی دار نیست. دلیل وجود این دو فلز در نمونه ها را می توان به عواملی از قبیل تمرکز جمعیت و فعالیت های صنعتی در مناطق شهری، آلودگی های زیست محیطی، ازدحام ترافیکی و ازدحام خودرو های سواری که خود یکی از عوامل مهم ورود این فلزات به محیط زیست می باشد، مرتبط دانست. به طور کلی توانایی بالای کشور در تولید عسل و صادرات آن به دیگر کشورها لزوم توجه به سالم بودن این محصول را افزایش می دهد.
http://www.aejournal.ir/article_135069_f43fd5604d2133abe6e89df2ea8b47d8.pdf
2021-04-21
505
510
10.22034/aej.2021.135069
طیف سنجی
فلزات سنگین
سرب
جیوه
عسل
فاطمه
رحمانی
fatemerahmani904@ut.ac.ir
1
گروه بهداشت و کنترل مواد غذایی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
عباسعلی
مطلبی
motalebi@ifro.ir
2
گروه بهداشت مواد غذایی، دانشکده دامپزشکی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
محیا
مظفرذوق
mahya.mozafar@ut.ac.ir
3
گروه بهداشت و کنترل مواد غذایی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
سونیا
شجاع قره باغ
shojas@ut.ac.ir
4
گروه بهداشت و کنترل مواد غذایی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تهران، تهران، ایران
AUTHOR
بحرینی، ر.؛ میرهادی، س.ا.؛ جواهری، س.د. و طالبی، م.، 1384. بررسی وضعیت عناصر سنگین در عسل، گرده و بدن زنبوران بالغ زنبورداری های استان تهران. فصلنامه دانش کشاورزی. دوره 15، شماره 4، صفحات 247 تا 252.
1
پیران، ف. و امامی فر، آ.، 1392. بررسی وضعیت عناصر سنگین آرسنیک، سرب و سلنیوم در عسل سنندج قروه و سقز استان کردستان. اولین کنفرانس ملی الکترونیکی علوم کشاورزی و محیط زیست.
2
مشتاقی، ح. و وکیل زاده، ا.، 1387. مقادیر برخی فلزات سنگین در عسل های تولید شده استان چهارمحال بختیاری. سر فصل پانل شیمی و سم شناسی مواد غذایی. پانزدهمین کنگره دامپزشکی ایران.
3
ناجی، ط.؛ صفائیان، ش.؛ رستمی، م. و صبرجو، م.، 1386. بررسی اثرات سولفات روی بر بافت آبشش بچه ماهی کپورمعمولی. فصلنامه علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 9، شماره 2، صفحات 29 تا 36.
4
Akbari, B.; Gharanfoli, F.; Khayyat, M.H.; Khashyarmanesh, Z.; Rezaee, R. and Karimi G., 2012. Determination of heavy metals in different honey brands from Iranian markets. Food Additives and Contaminants. Part B. Vol. 5, No. 2, pp: 105-111.
5
AOAC, Official Method. 2003. Determination of heavy metals in foods Atomic Absorption Spectrophotometry.
6
Azeredo, L.D.C.; Azeredo, M.A.A.; De souza, S.R. and Dutra VML., 2003. Protein contents and physicochemical properties in honey samples of Apis mellifera of different floral origins. Food Chemistry. Vol. 80, pp: 249-254.
7
Bilandzic, N.; Dokic, M.; Sedak, M.; Kolanovic, B.S.; Varenina, I.; Koncurat, A. and Rudan N., 2011. Determination of trace elements in Croatian floral honey originating from different regions. Food Chemistry. Vol. 128, No. 4, pp: 1160-1164.
8
Erbilir, F. and Erdoĝrul, O., 2005. Determination of heavy metals in honey in Kahramanmaraş City. Turkey environmental monitoring & assessment. Vol. 109, No. 1-3, pp: 181-187.
9
Farsi, A.; Javid, N. and Malakootian, M., 2019. Investigation of adsorption efficiency of Cu2+ and Zn2+ by red soil and activated bentonite from acid copper mine drainage. Desalin. Water Treat. Vol. 144, pp: 172-184.
10
Fredes, C. and Montenegro, G., 2006. Heavy metal and other trace elements contents in honey bee in Chile. Ciencia Investigacion Agraria. Vol. 33, No. 1, pp: 50-58.
11
Honarmandrad, Z.; Javid, N. and Malakootian, M., 2020. Efficiency of ozonation process with calcium peroxide in removing heavy metals (Pb, Cu, Zn, Ni, Cd) from aqueous solutions. SN Applied Vol. 2, No. 4, pp: 1-7.
12
Ioannidou, M.; Zachariadis, G.; Anthemidis, A. and Stratis, J.A., 2005. Direct determination of toxic trace metals in honey and sugars using inductively coupled plasma atomic emission spectrometry. Talant. Vol. 65, No. 1, pp: 92-97.
13
Mahmoudi, R.; Mardani, K. and Rahimi, B., 2018. Analysis of heavy metals in honey from north-western regions of Iran. Journal of Chemical Health Risks. Vol. 5, No. 4, pp: 251-256.
14
Mahmoudi, R.; Moosavy, M.H.; Norian, R.; Kazemi, S.; Asadi, N.M.R. and Mardani, K., 2014. Detection of oxytetracycline residues in honey samples using ELISA and HPLC methods. Pharmaceutical Sciences. Vol. 19, No. 4, pp: 145-50.
15
Mahmoudi, R.; Norian, R. and Pajohi, M.R., 2014. Antibiotic residue in Iranian honey. International Journal of Food. Vol. 17, pp: 2367-2373.
16
Mahmoudi, R.; Gajarbeygi, P. and Emami, J., 2015. Honey contamination with heavy metals in Iran. pp: 67-70.
17
Perna, A.; Intaglietta, I.; Simonetti, A. and Gambacorta, E., 2014. Metals in Honeys from Different Areas of Southern Italy. Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 92, No.3, pp: 253-258.
18
Pohl, P., 2009. Determination of metal content in honey by atomic absorption and emission spectrometries. Trends in Analytical Chemistry. Vol. 28, No. 1, pp: 117-128.
19
Rodriguez Garcia, J.C.; Barciela Garcia, J.; Herrero Latorre, C.; Martin, S.G. and Crecente R.P., 2003. Comparison of palladium magnesium nitrate and ammonium dihydrogenphosphate modifiers for lead determination in honey by electrothermal atomic absorption spectrometry. Jurnal of Food Chemistry. Vol. 91, No. 3, pp: 435-442.
20
Saghaei, S.; Ekici, H.; Demirbas, M.; Yarsan, E. and Tumer, L., 2012. Determination of the Metal Contents of Honey Samples from Orumieh in Iran. Kafkas of Veterinary Fakultesi Dergisi. Vol. 18, No. 2, pp: 281-228.
21
Singh, A.; Sharma, R.K.; Agrawal, M. and Marshall, F.M., 2010. Health risk assessment of heavy metals via dietary intake of foodstuffs from the wastewater irrigated site of a dry tropical area of India. Food and Chemical Toxicology. Vol. 48, pp: 611-619.
22