ORIGINAL_ARTICLE
برآوردی از وضعیت شکار در منطقه حفاظت شده چهل پا، استان خوزستان
شکار بی رویه و غیرمجاز از فعالیت هایی است که می تواند انقراض محلی جمعیت های مجزا و کوچک گونه های در تهدید را در پی داشته باشد. بنابراین، به منظور اتخاذ و توسعه راهبردهای مناسب در هر منطقه، دستیابی به آمارهای درست و جامع در زمینه وضعیت شکار ضرورتی اجتناب ناپذیر است. پژوهش حاضر، به بررسی وضعیت شکار در منطقه حفاظت شده چهل پا در شهرستان اندیمشک پرداخته است. تعداد 500 پرسشنامه به روش پرسشنامه جواب دار و مصاحبه حضوری، میان دو گروه شامل مردم محلی و شکارچیان منطقه توزیع شد. حدود 70 درصد شکار در منطقه از نوع تفریحی است، که بیش تر از نوع شکار تروفه است. بیش از 85 درصد شکارچیان اعلام نمودند که شکارهای صورت گرفته توسط آن ها بدون مجوز قانونی بوده است. بیش از 75 درصد شکارچیان، شکار گروهی را ترجیح داده و اغلب تمایل به تشکیل گروه های دو تا سه نفری دارند. حدود 50 درصد شکارچیان شمار کل و بز را در منطقه 200 تا 300 راس برآورد نمودند. مشارکت دادن ذی نفعان کلیدی در اجرای قوانین و طرح های مدیریت حیات وحش، استفاده از شیوه های مختلف برای جلب اعتماد بین جوامع بومی و سازمان های مسئول حفاظت از محیط زیست، استفاده از راهکارهای اجرایی برای کاهش تضاد بین انسان و حیات وحش، تلاش برای برچیدن اعتقادهای محلی بی پایه درباره استفاده های داروئی و سنتی از حیات وحش، حمایت از برنامه های اصولی به منظور جذب طبیعت گردان و تشویق توسعه صنایع دستی و سنتی منطقه می توانند به عنوان راهکارهای مدیریتی پیشنهادی در منطقه مورد توجه قرار گیرند.
http://www.aejournal.ir/article_60618_fd142b812c3cba247e6f59da0409ed88.pdf
2017-12-22
1
10
شکار غیرمجاز
جمعیت های کوچک
انقراض محلی
جوامع بومی
ذی نفعان
محمدرضا
اشرف زاده
mrashrafzadeh@nres.sku.ac.ir
1
گروه شیلات و محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و علوم زمین، دانشگاه شهرکرد
LEAD_AUTHOR
اکرم
مرادی
moradi313@yahoo.com
2
اداره حفاظت محیط زیست شهرستان مسجد سلیمان
AUTHOR
ازکیا، م. و دربان آستانه، ع.، 1382. روشهای کاربردی تحقیق. انتشارات کیهان.
1
اشرف زاده، م.؛ بتوندی، ز.؛ کریمی، ه. و سروش نیا، ر.، 1390. بررسی اهمیت منطقه شکار ممنوع قلعه شاداب در استان خوزستان از دید ذینفعان. مجله محیط شناسی. سال 37، شماره 59، صفحات 63 تا 76.
2
بوتکین،د. و کلر، ا.، 1384. شناخت محیط زیست (ترجمه: عبدالحسین وهابزاده). انتشارات جهاد دانشگاهی مشهد.
3
دهداردرگاهی،م.؛کرمی،م. وخراسانی،ن.، 1386. زون بندی منطقه شکار ممنوع دیلمان و درفک با استفاده از GIS. مجله محیط شناسی. سال 33، شمارة 43، صفحات 51 تا 60.
4
قاسمی،ن.، 1385. مجموعه قوانین و مقررات داخلی محیط زیست، انتشارات بهنامی.
5
کالی، گ. و سینکلایر، آ.، 1385. بوم شناسی و مدیریت حیات وحش (ترجمه: منصور مصداقی). انتشارات آستان قدس رضوی.
6
ناطقی مزینانی، ح.، 1386. شکار. نشریه طبیعت و حیات وحش ایران، شماره 8، صفحات 10 تا 11.
7
Aiyadurai, A., 2007. Hunting in a Biodiversity Hotspot: A survey on hunting practices by indigenous communities in Arunachal Pradesh, North-east India. The Rufford Small Grants Foundation, UK.
8
Alpert, P., 1996. Integrated conservation and development projects. BioScience. 46 p.
9
Bohne, A., 2008. Wildlife value, trophy hunting and rural development with illustrations from Tanzania. Conference on International Research on Food Security, Natural Resource Management and Rural Development. University of Hohenheim.
10
Cadman, M., 2000. Consuming Wild Life: The Illegal Exploitation of Wild Animals in South Africa, Zimbabweand Zambia. Animal Rights Africa and XweAfrican Wild Life.
11
Coppinger, J., 1994. Game viewing safaris: their potential and relationship to safari hunting. In: Lewis, D. M. (eds.) Wildlife Industries in Game Management Areas: Strategies and Solutions for Safari Hunting in Zambia. National Parks and Wildlife Services, Lusaka, Zambia, pp: 77-80.
12
Cowlishaw, G.; Mendelson, S. and Rowcliffe, J.M., 2005. Structure and operation of a bushmeat commodity chain in southwestern Ghana. Conservation Biology. Vol. 19,
13
pp: 139-149.
14
Eliason, S. L., 2003. Illegal Hunting and Angling: The Neutralization of Wildlife Law Violations. Society and Animals. Vol. 11, pp: 225-243.
15
Fa, J.; Currie, D. and Meewig, J., 2003. Bushmeat and food securityin the Congo Basin: Linkages between wildlife and people’s future. Environmental Conservation. Vol. 30,
16
pp: 71-78.
17
Faddy, M., 1994. Economic reflections and analysis of Zambia’s safari hunting industry. In: Lewis, D. M. (eds.) Wildlife Industries in Game Management Areas: Strategies and Solutions for Safari Hunting in Zambia. National Parks and Wildlife Services, Lusaka, Zambia, pp: 73-76.
18
Fiallo, E.A. and Jacobson, S.K., 1995. Local communities and protected areas: Attitudes of rural residents towards conservation and machalilla national park, Ecuador. Environmental Conservation. Vol. 22, pp: 241-249.
19
Gandiwa, E., 2011. Preliminary assessment of illegal hunting by communities adjacent to the northern Gonarezhou National Park, Zimbabwe. Tropical Conservation Science. Vol. 4, pp: 445-467.
20
He, G.; Chen, X.; Liu, W.; Bearer, S.; Zhou, S.; Cheng, L. Y.; Zhang, H.; Ouyang, Z. and Liu, J., 2008. Distribution of economic benefits from ecotourism: a case study of wolong nature reserve for giant Pandas in China. Environmental Management. Vol. 42, pp: 1017-1025.
21
Kaul, R.; Jandrotia, J.S. and Mc Gowan, P.J.K., 2004. Hunting of large mammals and pheasants in the western Indian Himalayas. Oryx. Vol. 9, pp: 426-431.
22
Kuchikura, Y., 1988. Efficiency and focus of blowpipe hunting among Semaq Beri hunter-gatherers of Peninsular Malaysia. Human Ecology. Vol. 16, pp: 271-305.
23
Kumpel, N.F., 2006. Incentives for sustainable hunting of bushmeat in Rio Muni.PhD thesis, Imperial College, London.
24
Lewis, D.M. and Alpert, P., 1997. Trophy Hunting and Wildlife Conservation in Zambia. Conservation Biology. Vol. 11, pp: 59-68.
25
Lindsey, P.A.; Romanãch, S.S.; Matema, S.; Matema, C.; Mupamhadzi, I. and Muvengwi, J., 2011. Dynamics and underlying causes of illegal bushmeat trade in Zimbabwe. Oryx. Vol. 45, pp: 84-95.
26
Musgrave, R.S.; Parker, S. and Wolok, M., 1993. The status of poaching in the United States: Are we protecting our wildlife? Natural Resources Journal. Vol. 33, pp: 977-1014.
27
Muth, R.M. and Bowe. J.F., 1998. Illegal harvest of renewable natural resources in North America: Toward a typology of the motivations for poaching. Society and Natural Resources. Vol. 11, pp: 9-24.
28
Newmark, W.D.; Manyanza, D.N.; Gamassa, D.G.M. and Sariko, H.I., 1994. The conflict between wildlife and local people living adjacent to protected areas in Tanzania: human density as a predictor. Conservation Biology. Vol. 8, pp: 249-255.
29
Olupot, W.; McNeilage, A.J. and Plumptre, A.J., 2009. An analysis of socioeconomics of bushmeat hunting at major hunting sites in Uganda. Working paper no. 38. Wildlife Conservation Society. New York.
30
Rana, M.P.; Sohel, M.S.I.; Mukul, S.A.; Chowdhury, M.S.H.; Akhter, S. and Koike, M., 2010. Implications of ecotourism development in protected areas: a study from Rema- Kalenga Wildlife Sanctuary, Bangladesh. iForest. Vol. 3, pp: 23-29.
31
Sekhar, N.U., 2003. Local people’s attitudes towards conservation and wildlife tourism around Sariska Tiger Reserve, India. Journal of Environmental Management.
32
Vol. 69, pp: 339-347.
33
Wadley, L., 2010. Were snares and traps used in the Middle Stone Age and does it matter? A review and a case study from Sibudu, South Africa. Journal of Human Evolution. Vol. 58, pp:179-192.
34
Weeks, P. and Mehta, S., 2004. Managing People and Landscapes: IUCN’s Protected Area Categories. Journal of Human Ecology. Vol. 16, pp: 253-263.
35
Wyler, L.S. and Sheikh, P.A., 2008. International Illegal Trade in Wildlife: Threats and U.S. Policy. Congressional Research Service, The Library of Congress, 101 Independence Ave, SE, Washington, DC.
36
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی نقاط داغ تلفات جاده ای حیات وحش در ذخیره گاه زیست سپهر توران
استان سمنان به عنوان یکی از مناطق مهم به لحاظ تنوع زیستی پستانداران بزرگ جثه، به ویژه یوزپلنگ آسیایی (Acinonyx Jubatus venaticus)، شاهد نرخ قابل توجه گسترش جاده ها به همراه توسعه عوامل انسانی است. یکی از گونه هایی که به شدت توسط شبکه جادهای این استان (جاده سمنان-مشهد) تهدید میشود یوزپلنگ آسیایی است. به طوری که، طی چند سال گذشته، تعداد هفت یوزپلنگ آسیایی در این جاده تلف شدهاند. پژوهش پیشرو با هدف تعیین نقاط داغ تلفات جادهای حیات وحش با استفاده از تابع تراکم کرنل در ذخیرهگاه زیست سپهر توران صورت گرفت. در این پژوهش دو نقطه به عنوان نقاط داغ در این منطقه تعیین شد که یکی از این نقاط دقیقا منطبق بر تلفات جادهای یوزپلنگ است. نقطه دیگر در نزدیکی روستای عباس آباد واقع شده است که عمده تلفات شغال، روباه، کفتار و گرگ به دلیل رفتار لاشهخواری در نزدیکی این روستا رخ داده است. نتایج پایش آبگذرها در نقاط داغ، عبور یوزپلنگ از دو آبگذر با ابعاد متوسط و بزرگ را نشان داد. در این مطالعه پیشنهادهایی به منظور کاهش تلفات جادهای پستانداران بزرگ جثه از قبیل اصلاح آبگذرها با ترکیب فنس کشی به منظور تسهیل عبور گوشت خواران و هم چنین حذف پوشش گیاهی در حاشیه جاده در فصول سخت سال برای آهوی ایرانی داده شده است.
http://www.aejournal.ir/article_61423_8fd556afd946cf87d6f2b8a348153bcf.pdf
2017-12-22
11
18
تصادفات جاده ای حیات وحش
ذخیره گاه زیست سپهر توران
یوزپلنگ آسیایی
نقاط داغ
علیرضا
محمدی
armohammadi1989@gmail.com
1
گروه محیط زیست دانشکده منابع طبیعی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران
LEAD_AUTHOR
کامران
الماسیه
kamran.almasieh@gmail.com
2
گروه مهندسی طبیعت، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی رامین خوزستان، ملاثانی
AUTHOR
محمدعلی
ادیبی
madibi60@gmail.com
3
گروه علوم محیط زیست، دانشکده انرژی محیط زیست، دانشگاه آزاد اسلامی واحدعلوم تحقیقات تهران
AUTHOR
محمدی، ع.؛ 1394. تعیین محدوده خطر تصادفات جادهای یوزپلنگ آسیایی (Acininyx jubatus venaticus) به منظور ارائه راهکارهای اجرایی جهت کاهش تلفات جادهای در محدوده ذخیرگاه زیست سپهر توران. پروژه بین المللی حفاظت از یوزپلنگ آسیایی. سازمان حفاظت محیط زیست. 150 صفحه.
1
Anderson, T.K., 2009. Kernel density estimation and K-means clustering to profile road accident hotspots. Accident Analysis & Prevention. Vol. 41, pp: 359-364.
2
Clevenger, A.P. and Huijser, M.P., 2011. Wildlife crossing structure handbook: design and evaluation in North America (No. FHWA-CFL/TD-11-003). pp: 70-100.
3
Clevenger, A.P. and Waltho, N., 2005. Performance indices to identify attributes of highway crossing structures facilitating movement of large mammals. Biological Conservation. Vol. 29, pp: 453-464.
4
Clevenger, A.P.; Chruszcz, B. and Gunson, K.E., 2001. Highway mitigation fencing reduces wildlife-vehicle collisions. Wildlife Society Bulletin. Vol. 14 pp: 646-653.
5
Farhadinia, M.S.; Akbari, H.; Mousavi, S.J.; Eslami, M.; Azizi, M.; Shokouhi, J. and Hosseini-Zavarei, F., 2013. Exceptionally long movements of the Asiatic cheetah Acinonyx jubatus venaticus across multiple arid reserves in central Iran. Oryx. Vol. 47, pp: 427-430.
6
Fieberg, J., 2007. Kernel density estimators of home range: smoothing and the autocorrelation red herring. Ecology. Vol. 88, pp: 1059-1066.
7
Gitzen, R.A.; Millspaugh, J.J. and Kernohan, B.J., 2006. Bandwidth selection for fixed-kernel analysis of animal utilization distributions. Journal of Wildlife Management. Vol. 70, pp:1334-1344.
8
Grilo, C.; Bissonette, J.A. and Santos-Reis, M., 2009. Spatial–temporal patterns in Mediterranean carnivore road casualties: consequences for mitigation. Biological Conservation. Vol. 142, pp: 301-313.
9
Gunson K.E.; Ireland, D. Schueler, F., 2012. A tool to prioritize high-risk road mortality locations for wetland forest herpetofauna in southern Ontario, Canada. North-Western Journal of Zoology. Vol. 8, pp: 409-413.
10
Malo, J.E.; Suarez, F. and Diez, A., 2004. Can we mitigate animal–vehicle accidents using predictive models? Journal of Applied Ecology. Vol. 41, pp:701-710.
11
Markolt, F.; Szemethy, L., Lehoczki, R. and Heltai,M., 2012. Spatial and temporal evaluation of wildlife-vehicle collisions along the m3 highway in Hungary. North-Western Journal of Zoology. Vol. 8, pp: 414-425.
12
Mateus, A.R.A.; Grilo, C. and Santos-Reis, M., 2011. Surveying drainage culvert use by carnivores: sampling design and cost–benefit analyzes of track-pads vs. video surveillance methods. Environmental monitoring and assessment. Vol. 181, pp: 101-109.
13
Mohammadi, A. and Kaboli, M., 2016. Evaluating wildlife–vehicle collision hotspots using kernel-based estimation: a focus on the endangered Asiatic cheetah in central Iran. Human-Wildlife Interactions. Vol. 10,pp:103-109.
14
Moreno, B.; Garcia-Alonso, C.R.; Hernandez, M.A.N.; Torres-Gonzalez, F. and Salvador-Carulla, L., 2008. Spatial analysis to identify hotspots of prevalence of schizophrenia. Social psychiatry and psychiatric epidemiology. Vol. 43, pp: 782-791.
15
Ramp, D.; Caldwell, J.; Edwards, K.A.; Warton, D. and Croft,D.B.,2005. Modelling of wildlife fatality hotspots along the snowy mountain highway in New South Wales, Australia. Biological Conservation. Vol. 126, pp: 474-490.
16
Snow, N.P.; Williams D. M, Porter W.F., 2014. A landscape-based approach for delineating hotspots of wildlife-vehicle collisions. Landscape Ecology. Vol. 29,
17
pp: 817-829.
18
Tourani, M.; Moqanaki, E.M. and Kiabi, B.H., 2012. Vulnerability of Striped Hyaenas, Hyaena hyaena, in a human-dominated landscape of Central Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 56, pp: 133-136.
19
Williamson, D.; McLafferty, S.; Goldsmith, V.; Mollenkopf, J. and McGuire, P., 1998. Smoothing crime incident data: new methods for determining the bandwidth in Kernel estimation. In 18th ESRI International User Conference, San Diego. Vol. 20, pp: 27-31.
20
ORIGINAL_ARTICLE
برآورد تمایل به پرداخت مردم هرمزگان برای حمایت از گونه به شدت در خطر انقراض خرس سیاه بلوچی (Ursus thibetanus gedrosianus, Blanford,1877)
پژوهش حاضر با هدف برآورد تمایل به پرداخت مردم استان هرمزگان برای حمایت از گونه به شدت در خطر انقراض خرس سیاه بلوچی (Ursus thibetanus gedrosianus) به منظور تعیین ارزش حمایتی این گونه منحصربه فرد به عنوان نماد طبیعت استان هرمزگان انجام شده است. در راستای انجام این تحقیق، تعداد 600 نفر از خانوارهای شهرستان بندرعباس به روش نمونه گیری تصادفی ساده انتخاب و چهره به چهره مصاحبه شدند. ابزار گردآوری داده ها، پرسش نامه ای محقق ساخته شامل: مشخصات جمعیت شناسی و سوالات ارزیابی تمایل به پرداخت افراد برای حمایت از گونه به شدت در خطر انقراض خرس سیاه بلوچی بود. پس از جمع آوری داده ها، نتایج با استفاده از الگوی کیفی لوجیت و بهره گیری از روش حداکثر راست نمایی، با کاربرد نرم افزارهای SPSS نسخه 21 و اقتصاد سنجی Eviews نسخه 8، تجزیه و تحلیل شدند. یافته های پژوهش نشان داد که 65/8 درصد از افراد مورد مطالعه، تمایل به پرداخت مبلغی برای حمایت از گونه به شدت در خطر انقراض خرس سیاه بلوچی دارند. نتایج این تحقیق نشان داد که متوسط تمایل به پرداخت ماهانه و سالانه هر خانوار هرمزگانی برای حمایت از گونه به شدت در خطر انقراض خرس سیاه بلوچی، به ترتیب معادل با 53645/96 و 643751/54 ریال است. براساس نتایج این پژوهش و مدل رگرسیونی لوجیت برآورد شده، متغیرهای تحصیلات، درآمد، اشتغال، عضویت در سازمان های مردم نهاد زیست محیطی، شناخت گونه و میزان پیشنهاد از عوامل مثبت تأثیرگذار بر میزان تمایل به پرداخت مردم هرمزگان برای حمایت از گونه به شدت در خطر انقراض خرس سیاه بلوچی است.
http://www.aejournal.ir/article_60659_73e5b0d6f7239eb5eb7b6c7050dcbe7a.pdf
2017-12-22
19
28
ارزش گذاری مشروط
ارزش حمایتی
گونه به شدت در خطر انقراض
خرس سیاه بلوچی
استان هرمزگان
امید
طبیعی
tabiee@iaua.ac.ir
1
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد ارسنجان، دانشگاه آزاد اسلامی ارسنجان، ایران
LEAD_AUTHOR
رقیه
جوادی
javadir556@gmail.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد ارسنجان، دانشگاه آزاد اسلامی ارسنجان، ایران
AUTHOR
حسن زاده، ر.، 1390. روش های تحقیق در علوم رفتاری (راهنمای علمی تحقیق). انتشارات ساوالان. چاپ سیزدهم. 317 صفحه.
1
ضیایی، ه.، 1388. راهنمای صحرایی پستانداران ایران. انتشارات کانون آشنایی با حیات وحش. چاپ سوم. 423 صفحه.
2
مرکز آمار ایران. 1395. آمار جمعیت کشور. رویت شده در خرداد 95.
3
Bateman, I.J.; Langford, I.H.; Turner, R.K.; Willis, K.G. and Garrod, G.D., 1995. Elicitation and truncation effects in Contingent Valuation Studies. Ecological Economics.
4
Vol. 12, No. 2, pp: 161-179.
5
Bishop, R.; Thomas. C.; Heberlein, A. and Mary,
6
J.K., 1983. Contingent Valuation of Environmental Assets: Comparison with a simulated Market. Natural Resources Journal. Vol. 23, No. 3, pp: 619-633.
7
Bremner, A. and Park, K., 2007. Public attitudes to the management of invasive non-native species in Scotland. Biological conservation. Vol. 139, pp: 306-314.
8
Brouwer, R.; Beukering, P.V. and Sultanian, E., 2008. The impact of the bird flu on public willingness to pay for the protection of migratory birds. Ecological Economics. Vol. 64, pp: 575-585.
9
Brown, T.L. and Decker, D.J., 2005. Introduction to special issue on global community based wildlife management issues. Human Dimensions of Wildlife. Vol. 10, 81 p.
10
Cameron, T.A. and Quiggin, J., 1994. Estimation Using Contingent Valuation Data from a Dichotomous Choice with Follow-Up Questionnaire. Journal of Environmental Economics and Management. Vol. 27, pp: 218-234.
11
Caro, T.; Engilis, A.; Fitzherbert, Jr.E. and Gardner,
12
T., 2004. Preliminary assessment of flagship species concept at a small scale. Animal Conservation. Vol. 7, pp: 63-70.
13
Chauhan, A. and Pirta, R.S., 2010. Public Opinion Regarding Human-Monkey Conflict in Shimla, Himachal Pradesh. Journal Human Ecology. Vol. 30, No. 2,
14
pp: 105-109.
15
Clark, T.W. and Wallace, R.L., 2002. Understanding the human factor in endangered species recovery: an introduction to human social process. Endanger Species Update. Vol. 19, No. 4, pp: 87-94.
16
Ebua, V.B.; Agwafo, T.E. and Fonkwo, S.N., 2011. Attitudes and perceptions as threats to wildlife conservation in the Bakossi area, South West Cameroon. International Journal of Biodiversity and Conservation. Vol. 3, No. 12,
17
pp: 631-636.
18
Fulton, D.C.; Manfredo, M.J. and Lipscomb, J., 1996. Wildlife value orientations: A conceptual and measurement approach. Human Dimensions of Wildlife. Vol. 1, pp: 24-47.
19
Giraud, K.; Turkin, B.; Loomis, J. and Cooper, J., 2002. Economic benefits of the protection program for the Steller sea lion. Marine Policy. Vol. 26, pp: 451- 458.
20
Ghadirian, T.; Sedaghati Khayat, A.; Taebi Otaghvar, Y.; Ghoddousi, A.; Pishvaei, H.; Riazifar, H.; Goudarzi, F. and Ghasemi, M., 2014. Strategic conservation planning for Asiatic black bear in Iran based on IUCN guidelines. International Bear News. Vol. 23, No. 1, pp: 8-11.
21
Han, S.Y. and Lee, C.K., 2008. Estimating the value of preserving the Manchurian black bear using the contingent valuation method. Scandinavian Journal of Forest Research. Vol. 23, No. 5, pp: 458-465.
22
Hanemann, W.M., 1984. Welfare evaluation in contingent evaluation experiments with discrete responses. American Journal of Agricultural Economics. Vol. 66, pp: 332-341.
23
Hanemann, W.M., 1994. Valuing the Environment through Contingent Valuation. Journal of Economic Perspectives, American Economic Association. Vol. 8, No. 4, pp: 19-43.
24
Heywood, V.H., 1995. Global biodiversity assessment. Cambridge: Cambridge University Press.
25
Hynes, S. and Hanley, N., 2009. The ‘‘Crex crex’’ lament: estimating landowners’ willingness to pay for corncrake conservation on Irish farmland.Biological Conservation. Vol. 142, pp: 180-188.
26
Israel, D. and Levinson, A., 2004. Willingness to pay for environmental quality: Testable Empirical Implication of the growth and Environmental Literature. Contributions to Economic Analysis and Policy. Vol. 3, pp: 1-29.
27
Jin, J.; Wang, Z. and Liu, X., 2008. Valuing black-faced spoonbill conservation in Macao: a policy and contingent valuation study.Ecological Economics. Vol. 68, pp: 328-335.
28
Kaczensky, P.; Blazic, M. and Gossowm, H., 2002. Public attitudes towards brown bears (Ursus arctos) in Slovenia. Biological Conservation. Vol. 118, pp: 661-674.
29
Katrina, B., 2000. People, parks, forests or fields: A realistic view of tropical forest conservation. Published by Elsevier Science Ltd Available online 24 July 2000.
30
Kellert, S.R., 1985. Social and perceptual factors in endangered species management. Journal Wildlife Management. Vol. 49, pp:528-236.
31
Kideghesho, J.R.; Røskaft, E. and Kaltenborn,
32
B.P., 2007. Factors influencing conservation attitudes of local people in Western Serengeti, Tanzania. Biodiversity and Conservation. Vol. 16, pp: 2213-2230.
33
Kotchen, M.J. And Reiling, S.D., 2000. Environmental attitudes, motivations, and contingent valuation of nonuse values: a case study involving endangered species.Ecological Economics. Vol. 32, pp: 93-107.
34
Lee, C., 1997. Valution of nature-based tourism resources using dichotomous choice contingent valuation method. Tourism Management. Vol. 18, No. 8, pp: 587-591.
35
Li, L.; Wang, J.; Shi, J.; Wang, Y.; Liu, W. and Xu,
36
X., 2010. Factors influencing local people’s attitudes towards wild boar in Taohongling National Nature Reserve of Jiangxi Province, China. ProcediaEnvironmental Sciences. Vol. 2, pp: 1846-1856.
37
Loomis, J. and Larson, D.M., 1994. Total economic values of increasing Gray whale population: results from a contingent valuation survey of visitors and household. Marine Resource Economic. Vol. 9, pp: 275-286.
38
Loomis, J. and White, D., 1998. Economic benefits of rare and endangered species: summary and meta-analysis. Ecological Economic. Vol. 18, pp: 197-206.
39
Loomis, J. and Ekstrand, E., 1998.Alternative approaches for incorporating respondent uncertainty when estimating willingness to pay: the case of the Mexican spotted owl. Ecological Economics. Vol. 27, pp: 29-41.
40
Maddal, G.S., 1991. Introduction to Econometrics, 2nd Edition. New York: Macmillan.
41
Mitchell, R.C. And Carson, R.T., 1989. Using survey to value public goods. The contingent valuation method. Washington. Resources for the Future. 484 p.
42
Mmassy, E.C. and Roskaft, E., 2014. Factors affecting local ecological knowledge and perceived threat to the kori bustard (Ardeotis kori struthiunculus) in the Serengeti ecosystem. International Journal ofBiodiversity and Conservation.
43
Vol. 6, No. 6, pp: 459-467.
44
Morzillo, A.T.; Mertig, A.G.; Hollister, J.W.; Garner, N. and Liu, J., 2010. Socioeconomic factors affecting local support for black bear recovery strategies. Environmental Management. Vol. 45, pp:1299-1311.
45
Naughton-Treves, L. and Treves, A., 2005. Socio ecological factors shaping local support for wildlife: Crop raiding by elephants and other wildlife in Africa. In People and wildlife: Conflict or co-existence? Ed. R. Woodroffe, S. Thirgood, and A. Rabinowitz. pp: 252-277. New York: Cambridge University Press.
46
Ranjita, B. and Clem, T., 2004. The net benefit of saving the Asian elephant: a policy and contingent valuation study. Ecological Economics. Vol. 48, pp: 93-107.
47
Ranjita, B. and Clem, T., 2005. Effects of change in abundance of elephants on willingness to pay for their conservation. Journal of Environmental Management.
48
Vol. 76, pp: 47-59.
49
Sawchuk, J.H.; Beaudreau, A.H.; Tonnes, D. and Fluharty, D., 2015. Using Stakeholder engagement to inform endangered species management and improve conservation. Marine Policy. Vol. 54, pp: 89-107.
50
Sitati, N.W.; Walpole, M.J.; Smith, R.J. and Leader Williams, N., 2003. Predicting spatial aspects of human elephant conflict. Journal of Applied Ecology. Vol. 40,
51
pp: 667-677.
52
Sijtsma, M.T.J.; Vaske, J.J. and Jacobs, M.H., 2012. Acceptability of lethal control of wildlife that damage agriculture in the Netherlands. Society and Natural Resources. Vol. 25, No. 12, pp: 1308-1323.
53
Stankey, G.G. and Shindler, B., 2006. Formation of social acceptability judgments and their implications for management of rare and little-known species. Conservation Biology. Vol. 20, pp: 28-37.
54
Tsi, E.A.; Ajaga, N.; Wiegleb, G. And Muhlenberg,
55
M., 2008. The willingness to pay (WTP) for the conservation of wild animals: Case of the Derby Eland (Taurotragus derbianus gigas) and the African wild dog (Lycaon pictus) in North Cameroon. African Journal of Environmental Science and Technology. Vol. 2, No. 3, pp: 051-058.
56
Vaske, J.; Jacobs, M. And Sijtsma, M., 2011. Wildlife value orientations and demographics in The Netherlands. European Journal of Wildlife Research. Vol. 57, No. 6,
57
pp: 1179-1187.
58
Vincenot, C.E.; Collazo, A.M.; Wallmo, K. and Koyma, L., 2015. Public awareness and perceptual factors in the conservation of elusive species: The case of the endangered Ryukyu flying fox. Global ecology and Conservation. Vol. 3, pp: 526-540.
59
Walpole, M.J. and Leader-Williams, N., 2002. Tourism and flagship species in conservation. Biodiversity and Conservation. Vol. 11, pp: 543-547.
60
Wambuguh, O., 2008. Human-urban wildlife interface: Interactions around Tilden Regional Park, SanFrancisco bay area, California. Hum Dim Wildlife. Vol. 13, pp: 71-72.
61
Whitehead, J.C., 1993. Total economic values for coastal and marine wildlife: specification, validity and valuation issues. Marine Resource Economic. Vol. 8, pp: 119-132.
62
Wilson, C. and Tisdell, C., 2007.How knowledge affects payment to conserve an endangered bird. Contemp Econ Policy. Vol. 25, pp: 226-237.
63
Zander, K.K.; Anisworth, G.B.; Meyerhoff, J. and Garnett, S.T., 2014. Threatened bird valuation in Australia. Plos one. Vol. 9, No. 6, pp: 1-9.
64
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر آموزش محیط زیست بر کاهش تعارض انسان و حیات وحش (مطالعه موردی منطقه حفاظت شده خائیز)
تعارض بین انسان و حیات وحش ناشی از وجود منابع مشترک و ایجاد رقابت بر سر این منابع محدود است و زمانی که این اثرات در ارتباط با اقتصاد و معیشت مردم نگریسته شود تبدیل به یک مسئله بحث برانگیز می شود. تاثیر اقدامات حفاظتی بر روی سلامت انسان بهمنظور ادغام کاهش فقر و حفاظت از تنوع زیستی بسیار مهم است.در بسیاری از کشورهای توسعه نیافته و کم درآمد، اثرات منفی درگیری انسان حیاتوحش بر جوامع محلی که از نزدیک با حیاتوحش ارتباط دارند مشخص شده است. دراین پژوهش جامعه آماری براساس پراکنش جمعیتی، سکونتگاه های اطراف و داخل منطقه حفاظتشده خائیز انتخاب شد. برای برآورد حجم نمونه گیری از فرمول کوکران استفاده شد و پس از جمع آوری و دسته بندی داده ها از دو روش آمار توصیفی و استنباطی جهت تجزیه و تحلیل داده ها استفاده گردید. تحلیل همبستگی نشان می دهد بین میزان آگاهی زیست محیطی ساکنان بومی منطقه حفاظتشده خائیز و کاهش تعارض انسان و حیات وحش منطقه رابطه معنی داری وجود دارد. همچنین نتایج رگرسیون چندمتغیره نشان داد که متغیرهای وضعیت اقتصادی- اجتماعی، عوامل تهدیدکننده محیطی، مدیریت حیات وحش و رفتار زیست محیطی حدود 86 درصد از تغییرات متغیر وابسته کاهش تعارض انسان و حیات وحش را تبیین می کنند. این بررسی نشان می دهد بیشتر مطالعات فقط به بررسی جنبه های فنی کاهش تضاد انسان و حیاتوحش می پردازد و امکانات فراوانی نیز برای کاهش این صدمات وجود دارد اما چالش اصلی حتی بعد از کاهش خسارات مستقیم همچنان ادامه می یابد. بنابراین برای حل این مشکل نیاز به یک برنامه جامع بلند مدت اجتماعی فرهنگی است.
http://www.aejournal.ir/article_60747_0a8b55e5dda210f17b82575361b101cb.pdf
2017-12-22
29
40
تعارض انسان و حیات وحش
آموزش محیط زیست
منطقه حفاظت شده خاییز
جوامع محلی
نوید
زمانی
naviduok@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده محیط زیست و منابع طبیعی، دانشگاه دانشگاه صنعتی خاتم الانبیا بهبهان
LEAD_AUTHOR
رقیه
تراهی
tarahi78@gmail.com
2
گروه جنگلداری، دانشکده محیط زیست و منابع طبیعی، دانشگاه دانشگاه صنعتی خاتم الانبیا بهبهان
AUTHOR
اداره کل حفاظت محیط زیست استان کهیگلویه و بویر احمد. 1395.گزارش سرشماری حیات وحش مناطق تحت حفاظت.
1
اداره کل محیط زیست استان خوزستان. 1395. گزارشات داخلی تحقیقات میدانی و سرشماری های حیات وحش مناطق تحت حفاظت و تالاب های استان.
2
برزه کار، ق.، 1384. پارک ها و تفرجگاه های جنگلی (مکان یابی و طرح ریزی). انتشارات سازمان نظام مهندسی کشاورزی و منابع طبیعی، چاپ اول. 231 صفحه.
3
برخوردار، ب.، 1387. شناخت محیط زیست. تهران، انتشارات دانشگاه پیام نور، چاپ اول. 180 صفحه.
4
بسمعلی، م.ر. و اسراری، ا.، 1393. بررسی تاثیر آموزش محیط زیست در کاهش شکار حیات وحش مطالعه موردی: منطقه حفاظت شده شاسکوه. دومین همایش ملی و تخصصی پژوهش های محیط زیست ایران. دانشگاه شهید مفتح همدان.
5
حیدری، ع.، 1382. تدوین الگوی مدیریتی توسعه پایدار آموزش محیط زیست برای نسل جوان کشور. پایان نامه کارشناسی ارشد مدیریت محیط زیست، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات تهران.
6
زمانی، ن.، 1389. بررسی و مقایسه عادات غذایی یوزپلنگ آسیایی در دو پناهگاه حیات وحش نایبندان و دره انجیر استان یزد. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه تهران.
7
زمانی پور، ا.؛ محمدقلی نیا، ج. و غوث، ک.،1390. کاربرد دانش بومی در تولید محصولات دامی، مطالعه موردی: ناحیه هردنگ. مطالعات فرهنگی اجتماعی خراسان. شماره 21، صفحات 74 تا 98.
8
صالحی، ص.، 1390. رفتارهای زیست محیطی، دانش زیست محیطی و تحصیلات. مجله علوم تربیتی. دوره 18، شماره 2، صفحات 201 تا 226.
9
کرمی پورشمس آبادی، م.، 1378. ارایه چارچوب نظری در خصوص چگونگی آموزش محیط زیست در نظام آموزش و پرورش کشور. رساله دکتری مدیریت آموزشی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات تهران.
10
مجنونیان، ه.، 1378. پارک های ملی و مناطق حفاظت شده ایران (ارزش ها و کارکردها). انتشارات زیبا. چاپ اول. 480 صفحه.
11
مجنونیان، ه. و گشتاسپ، ح.، 1388. راهنمای طرح ریزی مناطق حفاظت شده. چاپ اول. انتشارات معارف. 122 صفحه.
12
مجنونیان، ه.، 1393. مناطق حفاظت شده، مبانی و تدابیر حفاظت از پارک ها و مناطق در ایران و جهان. انتشارات دی نگار. چاپ اول. 414 صفحه.
13
مجنونیان، ه.، 1380. پارک ها برای زندگی. انتشارات سازمان حفاظت از محیط زیست.. چاپ اول. 425 صفحه.
14
ولایی، ع.، 1384. الگوهای رفتار با طبیعت (محیط زیست) از دیدگاه قرآن و سنت، پایان نامه دکتری(ph.d) .رشته علوم قرآن و احادیث، دانشگاه آزاد واحد علوم و تحقیقات تهران.
15
Amaja, L.G.; Hunde Feyssa, D. and Mekonnen Gutema, T., 2016. Assessment of types of damage and causes of human-wildlife conflict in Gera district, south western Ethiopia. Vol. 8, No. 5, pp: 49-54
16
Barua, M.; Shonil, A. and Bhagwat, S.J., 2013. The hidden dimensions of human–wildlife conflict: Health impacts, opportunity and transaction costs. Biological Conservation. Vol. 157. pp: 309-316.
17
Berkes, F.; Colding, J. and Folke, C., 2008. Navigating social-ecological systems: building resilience for complexity and change. Cambridge University Press.
18
Damerell, P.; Howe, C. and Milner-Gulland, E.J., 2013. Child-orientated environmental education influences adult knowledge and household behaviour. Environmental Research Letters. Vol. 8, No. 1, pp:105-106.
19
Dickman, A.J., 2010. Complexities of conflict: the importance of considering social factors for effectively resolving human–wildlife conflict. Animal Conservation. Vol. 13, pp:458-466.
20
Fascioneet, N. and Delacnand, S., 2004. people and predators from conflict to coexistence. Island press. Washington Covelo London.
21
García-Alvarado, J.; Santos, M.; Verde-Star, J. and Norma, L., 2001. Traditional uses and scientific knowledge of medicinal plants from Mexico and Central America. Journal of herbs, spices & medicinal plants. Vol. 8, No. 2-3, pp: 37-89.
22
LaurieMarker, L., 2002. Aspects of Cheetah (Acinonyx jubatus) Biology, Ecology and Conservation Strategies on Namibian Farmlands, PHD thesis, university of oxford.
23
Mills, M.G.L.; Broomhall, L.S. and du Toit, J.T., 2004. Cheetah (acinonyxjubatus) feeding ecology in the Kruger national park and a comparsion across African savanna habitat: is the cheetah only a successful hunter on open grassland plains? Wildly. Biol. Vol. 10, pp:177-186.
24
Oguz, D.; Cakci, I. and Kavas, S., 2010. Environmental awareness of university students in Ankara, Turkey. African Journal of Agricultural Research. Vol. 5, No. 19, pp: 36-2629.
25
Rakshya, T., 2016. Living with wildlife: Conflict or co-existence Acta Ecologica Sinica. Vol. 36, No. 6,
26
pp: 509-514.
27
Salehi, S., 2010. People and the environment, LAP Lambert Academic publishing.
28
Vasilios, L.; Vasileios, J.; Kontsiotis, M.; Georgari, K. and Baltzi, I., 2017. Public acceptance of management methods under different human–wildlife conflict scenarios. Science of The Total Environment. Vol. 579. pp: 685-693
29
Williams, H., 2011. Examining the effects of recycling education on the knowledge, attitudes, and behaviors of elementary school students. Illinois Wesleyan University. Outstanding Senior Seminar Papers.
30
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی مقایسه ای،آنالیتیک و الکتروفورتیک الگوی پروتئین های سرم اسبچه خزر و اسب عرب ایرانی (Equus ferus caballus)
اسبچه خزری واسب عرب ایرانی از هزاران سال پیش بومی ویک نژاد کاملاً ایرانی می باشند. پروتئین ها به عنوان آنزیم، هورمون، پادتن، عوامل انعقادی و... نقش دارند. این مطالعه در استان های گیلان، مازندران، گلستان و خوزستان بر سرم 86 اسب عرب ایرانی و 94 کاسپین پونی انجام شد. پروتئین تام سرم با دستگاه بیوشیمی آنالیزر الن (اپندرف) و بهروش بیوره و برای تفکیک و میزان اجزاء پروتئین های سرم با دستگاه الکتروفورز (سبیا مدل 20K) به روش ژل آگارز مورد سنجش قرارگرفت. در اسب عرب میانگین پروتئین تام 0/64±7/2، آلبومین0/56±2/9، α1 گلوبولین 0/09±0/2، α2 گلوبولین 0/28±1/2، β گلوبولین 0/18±0/1، 1γگلوبولین 0/85±0/7، 2γ گلوبولین 0/4±1/2 و میانگین گلوبولین تام 0/55±4/2 گرم در دسیلیتر و نسبت آلبومین به گلوبولین 0/18±0/7 در برابر کاسپین پونی میانگین پروتئین تام 0/8±7/34، آلبومین 0/03±3/68، α1 گلوبولین 0/004±0/19، α2 گلوبولین 0/01±0/78، 1 βگلوبولین 0/02±0/71، 2β گلوبولین 0/01±0/46، γ گلوبولین 0/02±1/54، گلوبولین تام 0/05±3/65 و نسبت آلبومین به گلوبولین 0/01± 1/01 به دست آمد. یافته های این پژوهش نشان داد که بتا یک و بتا دو گلوبولین در میان دو بخش آلبومین و گاما گلوبولین می باشند.
http://www.aejournal.ir/article_61111_0a6b2ddace32a91811ed1c5a4c963d69.pdf
2017-12-22
41
48
الکتروفورز
پروتئین های سرم
اسب عرب ایرانی
اسبچه خزر
لیلا
مدیری
leim_clinpathem@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی سلولی و مولکولی، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی لاهیجان، ایران
LEAD_AUTHOR
بهاری ،ع.ا. و چاله چاله،ع.،1380.تعیین دامنه مرجع پروتئین تام سرم و فراکسیون های آن در اسب های کرد به روش الکترفورز استات سلولز. دامپزشکی دانشگاه تهران. دوره 56، شماره3، صفحات 75 تا 79.
1
رشیدی نیا، م.،1374.تعیین میزان پارامترهای طبیعی بیوشیمیایی سرم خون اسب های عرب ایرانی و ترکمن. پایان نامه دکتری تخصصی از دانشگده دامپزشکی دانشگاه تهران.
2
Ball, C., 1994. Horse and Pony Breeds. Apple Press.
3
London. 79 p.
4
Barta, O., 1993. Veterinary Clinical Immunology Laboratory. Bar-Lab. Inc. Vol: 2, pp: 1-12.
5
Bierer, B.W., 1969. Electrophoretic analysis of blood serum and plasma proteins of normal horses. Amirecan Journal of Veterinary Research. Vol. 30, pp: 2237-2240.
6
Coffman, J.R., 1969. Clinical application of serum protein electrophoresis in the horse. In proceedings 14th Ann Meeting American Assocaition Equine practitioners. Philadelphia. pp: 265-279.
7
Colahan, P.T.; Mayhew, I.G.; Merritt, A.M. and Moore, J.N., 1999. Equine Medicine and Surgery.Vol. 1,2,5th ed. Mosby. United States of America. pp: 88-717.
8
Coles, E.H., 1986. Veterinary clinical Pathology. 4th Ed. W. B. Saunders Co. Philadelphia. pp: 267-278.
9
Dhanotiya, R.S., 1999. Textbook of Veterinary Biochemistry. Jaypee. Newdelhi. pp: 35-141.
10
Duncan, R.J., 1994. Veterinary Laboratory Medicine Clinical Pathology. 3rd ed. Iowa State Veterinary Press.
11
pp: 112-238.
12
Eades, S.C. and Bounous, D.I., 1997. Laboratory Profiles of Equine Diseases Mosby. St. Louis. pp: 6-217.
13
Feldman, B.F.; Zinkl, J.G. and Jain, N.C., 2000. Schalm's Verterinary Hematology. 5th ed. Lippincott Williams and Wilkins. pHiladelphia. pp: 2-1270.
14
Hulley, S.B.; Cook, W.S.; Wilson, M.Z.; Nichaman, F.T. and Hatch, F.T., 1971. Quantitation of serum lipoproteins by electrophoresis on agarose gel: standardization in lipoprotein concentration units (mg/100 ml) by comparison with analytical ultracentrifugation J. of Lipid Research. Vol. 12, pp: 420-433.
15
Irfan, M., 1967. Electrophoretic pattern of serum proteins in normal animals. Research in Veterinary Science. Vol. 8,
16
pp: 137-142.
17
Kaneko, J.J.,1989. Serum proteins and dysproteinemias. In kaneko, J.J. Clinical Biochemistry of Domestic Animals. 4 th ed. Academic Press. pp: 97-118.
18
Kirk, G.R.; Hutcheson, D.R. and Neats, S., 1975. Electrophoretic pattern of serum protein in clinically normal horses and ponies with laminitis. Veterinary Medical Small Animal Clinics. Vol. 70, pp: 337-339.
19
Kristensen, F. and Firth, E.C., 1997. Analysis of serum proteins and cerebrospinal fluid in clinically normal horses using agarose electrophoresis. American Journal of Vaterinary Research. Vol. 38, pp: 1089-1092.
20
Loving, N.S. and Johnston, A.M., 1995. Veterinary Manual for the Performance Horse. Blackwell Science. United Kingdom. pp: 185-201.
21
Mattheeuws, D.R.G.; Kaneko, J.J.; Loy, RG.; Cornelius, C.E. and Wheat, J.D., 1966. Compartmentalization and turnover of I-labeld albumin and gamma globulin in horse American J. Veterinany Research. Vol. 27, pp: 699-705.
22
McGavin, M.D.; Carlton, W.W. and Zachary, J.F., 2002. Thomson's Special Veterinary Pathology. 3rd ed. Mosby. St. Louis. pp: 64-369.
23
Meyer, D.J. and Harvey, J.W., 1998. Meyer & Harvey Veterinary Laboratory Medicine Interpretation & Diagnosis. pp: 151-330.
24
Osbaldiston, G.W., 1972. Serum protein fractions in domestic animals. British Veterinary Journal. pp: 386-393.
25
Pesce, A.J. and Kaplan, L.A., 1987. Method in Clinical Chemistry. C.V. Mosby Company. St. Louis. pp: 727-1138.
26
Pratt, P.W., 1996. Laboratory Procedures for Veterinary Technicians. 3rd ed. Mosby. St. Louis. pp: 110-112.
27
Reed, S.M. and Bayly, W.M., 1998. Equine Internal Medicine.W.B. Saunders Company. Philadelphia. pp: 2-945.
28
Riond, B.; WengerRiggenbach, B. and HofmannLehmann, R., 2009.Serum protein concentrations from clinically healthy horses determined by agarose gel electrophoresis. Vet Clin Pathol. Vol. 38, No. 1, pp: 73-79.
29
Zamani, M. and Atyabi, N., 2011. Analysis of serum proteins electrophoresis in clinically healthy miniature Caspian horse. Comp Clin Pathol. Springer-Verlag London Limited.
30
ORIGINAL_ARTICLE
استخراج لیپوپروتئین با چگالی کم از زرده تخم مرغ و مقایسه آن با لستین سویا و رقیق کننده تجاری آندرومد در انجمادپذیری اسپرم گاو
در طی فرآیند انجماد ساختارهای بیوشیمیایی و آناتومیکی سلول اسپرم تحت تاثیر قرار میگیرد. لذا استفاده از مواد محافظ شوک سرما در محیط انجماد، ضروریترین بخش درفرآیند انجماد اسپرم می باشد. هدف از این مطالعه بررسی تاثیر استفاده از سطوح مختلف لیپوپروتئین با چگالی کم (6، 8 و 10 درصد) و سطوح مختلف لستین سویا به عنوان ماده محافظ شوک سرما، در مقایسه با رقیق کننده تجاری آندرومد بر اسپرم های منجمد-یخگشایی شده گاو هلشتاین می باشد. در این تحقیق از 3 رأس گاو هلشتاین دو بار در هفته توسط واژن مصنوعی اسپرم گیری شد.جهت از بین بردن اثرات فردی دام ها، انزال ها به نسبت مساوی با هم مخلوط شدند. نمونه های رقیق شده منی بعد از سردسازی و پر شدن در پایوت ها، منجمد شده و در ازت مایع نگه داری شدند. نتایج بعد از یخ گشایی نشان داد که بین سطوح مختلف LDL و هم چنین سطوح مختلف لستین سویا اختلاف معنی داری از نظر پارامترهای ارزیابی شده وجود ندارد. استفاده از رقیق کننده آندرومد موجب بهبود معنی دار پارامترهای کنتیکی و جنبایی، زنده مانی و یکپارچگی غشای پلاسمایی اسپرم در سطوح مختلف LDL شد (0/05>P). جنبایی پیش رونده در سطوح 1، 1/5 و 2 درصد لستین به طور معنی داری پایی نتر از آندرومد بود. اختلاف معنی داری در زنده مانی و یکپارچگی غشای پلاسمایی سطوح مختلف لستین و رقیق کننده آندرومد مشاهده نشد. به طورکلی می توان رقیق کننده حاوی 3 درصد لستین سویا نتایج مشابهی با رقیق کننده تجاری آندرومد داشت.
http://www.aejournal.ir/article_55641_2b07adbe5ea6aa19fc486f689c1b64d6.pdf
2017-12-22
49
56
انجماد اسپرم
لیپوپروتئین با چگالی کم
لستین سویا
آندرومد
گاو هلشتاین
ایرج
اشرفی
i.ashrafi@tabrizu.ac.ir
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز
AUTHOR
حسین
دقیق کیا
hdk6955@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز
LEAD_AUTHOR
غلامعلی
مقدم
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز
AUTHOR
عادل
صابری وند
4
دانشکده دامپزشکی، دانشگاه تبریز
AUTHOR
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر سن اولین زایش بر صفات فاصله گوساله زایی و طول دوره خشکی گاوهای هلشتاین
هدف از تحقیق حاضر، بررسی اثر سن اولین زایش بر صفات فاصله گوساله زایی و طول دوره خشکی و برآورد مولفه های واریانس، ارزش های اصلاحی و روندهای ژنتیکی و فنوتیپی این صفات در کلاس های مختلف سن اولین زایش (23/4-20، 26-23/5 و 26≤ ماه) گاوهای هلشتاین استان اصفهان بود. در این تحقیق، از رکوردهای 62796 راس گاو متعلق به 72 گله که طی سال های 1373 تا 1394 زایش داشته اند، استفاده شد. آنالیز داده ها توسط رویه Mixed نرم افزار آماری 9.2 SAS و برآورد اجزای واریانس و ارزش های اصلاحی صفات با روش REML نرم افزار DMU انجام شد. نتایج نشان داد که کم ترین میانگین حداقل مربعات صفات فاصله گوساله زایی و طول دوره خشکی به ترتیب مربوط به کلاس سنی اول و کلاس های سنی اول (23/4-20) و دوم (26-23/5) و بیش ترین آن در هر دو صفت مربوط به کلاس سنی سوم بود (0/01>P). هم چنین کم ترین میانگین ارزش اصلاحی فاصله گوساله زایی در کلاس سنی دوم و برای طول دوره خشکی در کلاس سنی اول محاسبه شد (0/01>P). در مورد روند ژنتیکی، کم ترین میزان در هر دو صفت مربوط به کلاس های اول و دوم سن اولین زایش و برای روند فنوتیپی نیز در طی سالیان اخیر سیر نزولی با کاهش سن اولین زایش مشاهده شد (0/01>P). بنابراین با توجه به این نتایج می توان کلاس های اول و دوم سن اولین زایش (< 26 ماه) را برای گاوهای هلشتاین استان اصفهان پیشنهاد کرد.
http://www.aejournal.ir/article_61299_9e842f8f9395af96caa323cccc654e20.pdf
2017-12-22
57
64
سن اولین زایش
فاصله گوساله زایی
طول دوره خشکی
مولفه های واریانس
استان اصفهان
ربیع
رهبر
rahbarrabie@gmail.com
1
گروه کشاورزی، دانشگاه پیام نور، صندوق پستی 3697-19395 تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
خلج زاده، س.، 1393. برآورد پارامترهای ژنتیکی سن اولین زایش و تاثیر آن بر صفات تولیدی گاو شیری هلشتاین. نشریه علوم دامی (پژوهش و سازندگی). شماره 103، صفحات 15 تا 24.
1
دلجوعیسی لو، ح.، و اسکندری نسب، م. پ.، 1390. برآورد پارامترها و روند ژنتیکی و فنوتیپی صفات تولیدمثلی گاوهای هلشتاین کشت صنعت خرم دره زنجان. نشریه علوم دامی (پژوهش و سازندگی). شماره 92، صفحات 52 تا 58.
2
شهدادی، ع.؛ حسنی، س.؛ ساقی، د.ع.؛ آهنی آذری، م.؛ اقبال، ع. و رحیمی، ع.، 1393. برآورد پارامترهای ژنتیکی صفات تولیدی و تولیدمثلی دوره اول شیردهی در گاوهای هلشتاین ایران. نشریه پژوهش در نشخوارکنندگان. شماره 4، صفحات 109 تا 126.
3
فرهنگ فر، ه. و نعیمی پوریونسی، ح.، 1386. برآورد پارامترهای فنوتیپی و ژنتیکی صفات تولید و تولیدمثل در نژاد گاو هلشتاین ایران. مجله علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی. شماره 1، صفحات 431 تا 441.
4
نافذ، م.؛ زره داران، س.؛ حسنی، س. و سمیعی، ر.، 1391. ارزیابی ژنتیکی صفات تولیدی و تولیدمثلی در گاوهای هلشتاین شمال کشور. نشریه پژوهش های علوم دامی ایران. شماره 4، صفحات 69 تا 77.
5
نصرتی، م. و طهمورث پور، م.، 1390. ارزیابی ژنتیکی و برآورد روند صفات تولیدی و تولیدمثلی گاوهای هلشتاین استان خراسان رضوی با استفاده از آنالیز چندمتغیره. نشریه پژوهش های علوم دامی ایران. شماره 3، صفحات 280 تا 286.
6
نعیمی پوریونسی،ح.؛ طهمورث پور، م. و شریعتی، م.م.، 1394. اثر سن اولین زایش بر فاصله گوساله زایی و طول دوره خشکی گاوهای شیری در اقلیم نیمه خشک ایران. نشریه پژوهش در نشخوارکنندگان. شماره 3، صفحات 163 تا 176.
7
Aghajari, Z.; Ayatollahi Mehrgardi, A.; Tahmasbi, R. and Moghbeli, M., 2015. Genetic and phenotypic trends of productive and reproductive traits in Iranian Holstein dairy cattle of Isfahan Province. Iranian Journal of Applied Animal Science. Vol. 5, No. 4, pp: 819-825.
8
Ben Gara, A.; Bouraoui, R.; Rekeik, B.; Hammami, H. and Rouissi, H., 2009. Optimal age at first calving for improved milk yield and length of productive life in Tunisian Holstein cows. American-Eurasian Journal of Agronomy. Vol. 2, No. 3, pp: 162-167.
9
Buaban, S.; Duangjindam, M.; Suzuki, M.; Masuda, Y.; Sanpote, J. and Kuchida, K., 2015. Short communication: Genetic analysis for fertility traits of heifers and cows from smallholder dairy farms in a tropical environment. Journal of Dairy Science. Vol. 98, pp: 4990-4998.
10
CastilloJuarez,H.; Oltenacu,P.O.;Blake,R.W.;Mcculloch, C.E. and Cienfuegos-Rivas, E.G., 2000. Effect of herd environment on the genetic and phenotypic relationships among milk yield, conception rate and somatic cell score in Holstein cattle. Journal of Dairy Science.
11
Vol. 83, pp: 807-814.
12
Cavani, L.; Garcia, D.A.; Carreño, L.O.D.; Ono, R.K.; Pires, M.P.; Farah, M.M.; Ventura, H.T.; Millen, D.D. and Fonseca, R., 2015. Estimates of genetic parameters for reproductive traits in Brahman cattle breed. Journal of Animal Science. Vol. 93, pp: 3287-3291.
13
Cooke, J.; Cheng, Z.; Bourne, N. and Wathes, D., 2013. Association between growth rates, age at first calving and subsequent fertility, milk production and survival in Holstein Friesian heifers. Journal of Animal Science. Vol. 91,
14
Faraji-Arough, H. and Rokouei, M., 2016. Bayesian inference of genetic parameters for reproductive traits in Sistani native cows using Gibbs sampling. Journal of Livestock Science and Technologies. Vol. 4, No. 2, pp: 39-49.
15
Ghiasi, H.; Pakdel, A.; Nejati-Javaremi, A.; Mehrabani-Yeganeh, H.; Honarvar, M.; González-Recio, O.; Jesus-Carabaño, M. and Alenda, R., 2011. Genetic variance components for female fertility in Iranian Holstein cows. Livestock Science. Vol. 96, pp: 1-4.
16
Ghiasi, H. and Honarvar, M., 2016. Genetic and phenotypic trends of fertility traits Iranian Holstein cows. Iranian Journal of Applied Animal Science. Vol. 6, No. 1, pp: 53-58.
17
Hare, E.; Norman, H.D. and Wright, J.R., 2006. Trends in calving ages and calving intervals for dairy cattle breed in the United States. Journal of Dairy Science. Vol. 89, pp: 365-370.
18
Heinrichs, A.J., 1993. Raising dairy replacement to meet the need of the 21st century. Journal of Dairy Science.
19
Vol. 76, pp: 3179-3187.
20
Henderson, C., 1988. Theoretical basis and computational methods for a number of different animal models. Journal of Dairy Science (Supplement 2). Vol. 71, pp: 1-16.
21
Madsen, P. and Jensen, J., 2007. A user's guide to DMU. University of Aarhus, DJF, Research Centre Foulum, Denmark.
22
Makgahlela, M.L.; Banga, C.B.; Norris, D.; Dzama, K. and Ngambi, J.W., 2008. Genetic Analysis of Age at First Calving and Calving Interval in South African Holstein Cattle Asian. Journal of Animal and Veterinary Advances. Vol. 3, pp: 197-205.
23
Montaldo, H.H.; Casillo-Juarez, H.; Valencia-Posadas, M.; Cienfuegos-Rivas, E.G. and Ruiz-Lopez, F.J., 2010. Genetic and environmental parameters for milk production, udder health, and fertility traits in Mexican Holstein cows. Journal of Dairy Science. Vol. 93, pp: 2168-2175.
24
Mourits, M.C.M.; Dijkhuizen, A.A.; Hurine, R.B.M. and Galligan, D.T., 1997. Technical and economic models to support heifer management decisions: basic concepts. Journal of Dairy Science. Vol. 80, pp: 1406-1415.
25
Nilforooshan, M. and Edriss, M., 2004. Effect of age at first calving on some productive and longevity traits in Iranian Holsteins of the Isfahan Province. Journal of Dairy Science. Vol. 87, pp: 2130-2135.
26
Pirlo, G., 1997. Rearing cost of replacement heifer and optimal age at first calving. (In Italian) Supplement of L’Informatore Agrario. Vol. 37, pp: 9-12.
27
Pirlo, G.; Miglior, F. and Speroni, M., 2000. Effect of age at first calving on production traits and on difference between milk yield returns and rearing costs in Italian Holsteins. Journal of Dairy Science. Vol. 83, pp: 603-608.
28
Plate-Church, A., 2002. Determining Optimal Age at First Calving. Communications Manager, Cooperative Resources International. National Animal Health Monitoring System.
29
Ruiz-Sanchez, R.; Blake, R.W.; Castro-Gamez, H.M.A.; Sanchez, F.; Montaldo, H.H. and Castillo-Juarez,
30
H., 2007. Changes in the association between milk yield and age at first calving in Holstein cows with herd environment level for milk yield. Journal of Dairy Science. Vol. 90, No. 4, pp: 4830-4834.
31
Salazar Carranza, M.; Castillo Badill, G.; Murillo Herrera, J.; Hueckmann Voss, F. and Jose Romero Zuniga, J., 2014. Effect of age at first calving on first lactation milk yield in Holstein cows from Costa Rican specialized dairy herds. Open Journal of Veterinary Medicine. Vol. 4, pp: 197-203.
32
Salem, M.; Esmail, H.; Sadek, R. and Nigm, A., 2006. Phenptyipic and genetic parameters of milk production and reproductive performance of Holestein cattle under the intensive production system in Egypt. Egyptian Journal of Animal Production. Vol. 43, pp: 1-10.
33
Sahin, A.; Ulutaş, Z.; Yýlmaz Adkinson, A.W. and Adkinson, R., 2014. Genetic parameters of first lactation milk yield and fertility traits in Brown Swiss cattle. Annals of Animal Science. Vol. 14, pp: 545-557.
34
SAS 9.2, SAS Institute Inc. 2008. SAS 9.2 Help and Documentation. Cary, NC: SAS.
35
Suzuki, M., 2006. Heritability of herd life and relationship between herd life and milk production, type and fertility traits of Holstein cows in Japan. Nihon Chikusan Gakkaiho.
36
Vol. 77, No. 1, pp: 9-15.
37
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات غلظت های مختلف رقیق کننده منی عاری از ترکیبات حیوانی بر ویژگی های اسپرم بز در شرایط سرد
یک حجم منی به دست آمده از 4 راس بز نژاد مهابادی 3-4 ساله در فصل تولیدمثلی در 20 حجم رقیق کننده بر پایه بافر تریس حاوی مقادیر 0/5، 1، 1/5، 2 و 2/5 درصد لسیتن سویا به عنوان افزودنی با منشا غیرحیوانی و یک درصد زرده تخم مرغ به عنوان افزودنی با منشا حیوانی مخلوط شد و اثرات افزودنی ها بر جنبایی کل و پیش رونده، زنده مانی، یک پارچگی غشاء و میزان اسپرم های دارای مورفولوژی غیرطبیعی در 2، 6، 24 و 48 ساعت پس از نگه داری منی در دمای 4 درجه سانتی گراد بررسی شدند. نتایج نشان دادند که با افزایش زمان نگه داری میزان جنبایی کل و پیش رونده، یک پارچگی غشاء، زنده مانی و درصد اسپرم های با مورفولوژی طبیعی به طور معنی داری کاهش یافتند (0/05>P). در زمان های مورد ارزیابی هیچ تفاوت معنی داری در جنبایی کل و پیش رونده و یک پارچگی غشاء بین رقیق کننده های مختلف وجود نداشت (0/05<P). در 24 ساعت پس از نگه داری منی در شرایط سرد زنده مانی اسپرم در رقیق کننده حاوی 1/5 درصد لسیتین بیش تر از رقیق کننده حاوی 0/5 درصد لسیتین بود. در 6، 24 و 48 ساعت پس از نگه داری منی در شرایط سرد درصد اسپرم های با مورفولوژی غیرطبیعی در رقیق کننده حاوی 1/5 درصد لسیتین به طور معنی داری کم تر از سایر رقیق کننده های حاوی زرده و برخی از سطوح مختلف لسیتین بودند (0/05>P). با توجه به نتایج به دست آمده، رقیق کننده حاوی 1/5 درصد لسیتین سویا به عنوان رقیق کننده مناسب برای نگه داری اسپرم بز در شرایط سرد می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_61428_cfe2a877da5293fae61d842c43ad003e.pdf
2017-12-22
65
72
لسیتین سویا
رقیق کننده
اسپرم بز
شرایط سرد ذخیره
کاظم
کریمی
karimikazem@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
LEAD_AUTHOR
مهدی
ژندی
mzhandi@ut.ac.ir
2
گروه علوم دامی ، دانشکده علوم و مهندسی کشاورزی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
فولادوند، ف.؛ کریمی، ک. و ژندی م.، 1393. مقایسه اثر سه رقیق کننده لسیتین، شیر و زرده تخم مرغ بر نگه داری منی قوچ نژاد زندی در شرایط سرد. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال6، شماره 2، صفحات 83 تا 88.
1
Agarwal, A.; Prabakaran, SA. and Said, TM., 2005. Prevention of oxidative stress injury to sperm. J androl.
2
Vol. 26, pp: 654.
3
Aires, V.A.; Hinsch, K.D.; Mueller-Schloesser, F.; Bogner, K.; Mueller-Schloesser, S. and Hinsch, E., 2003. In vitro and in vivo comparison of egg yolk-based and soybean lecithin-based extenders for cryopreservation of bovine semen. Theriogenology. Vol. 60, pp: 269-279.
4
Aitken, R.J.; Harkiss, D. and Buckingham, D., 1993. Relationship betweeniron-catalysed lipid peroxidation potential and human spermfunction. Journal of Reproduction and Fertility. Vol. 98, pp: 257-265.
5
Alaud, D.; Chaudhry, R.A. and Ahmad, K., 1981. Effect of different extenders on freezability of buffalo semen. J PakVet. Vol. 1, pp: 59-61.
6
Amann, R.P. and Graham, J.K., 1993. Spermatozoa function in: MC Kinnor. A.O., J.L. Voss. Equine reproduction. Philadelpha: Lea and Febiger. pp: 715-745.
7
Ball, B.A.; Medina, V.; Gravance, C.G. and Bumber, J., 2001. Effect of antioxidants on preservation of motility, viability and acrosomal integrity of equine spermatozoa during storage at degree 5 C. Theriogenology. Vol. 56, No. 4, pp: 577-589.
8
Baumber, J.; Ball, B.A.; Gravance, C.G.; Medina, V. and Davies, M.C.G., 2000. The effect of reactive oxygen Species on equine sperm motility, viability, acrosomal integrity, mitochondrial membrane potential and membrane lipid peroxidation. Andrology. Vol. 21, No. 6, pp: 895-902.
9
Bohlooli, S.; Cedden, F.; Pisjang, J.; Razzaghzadeh, S. and Bozoglu, S., 2012. The effect of different extenders on post thaw sperm viability, motility and membrane integrity in cryopreserved semen of zandi ram. J. Basic. Appl. Sci. Vol 2, pp: 1120-1123.
10
Bousseau, S.; Brillard, J.; Marquant-Le Guienne, B.; Guerin, B.; Camus, A. and Lechat, M., 1998. Comparison of bacteriological qualities of various egg yolk sources and the in vitro and in vivo fertilizing potential of bovine semen frozen in egg yolk or lecithin based diluents. Theriogenology. Vol. 50, pp: 699-706.
11
Bousseau, S. and Brillard, J., 1994. In vitro and in vivo results of fertility in cattle, following inseminations performed with semen diluted and frozen in a diluent free of animal origin products (Biociphos Plus).
12
Fazeli, P.; Zamiri, M.J.; Farshad, A. and Khalili, B., 2010. Effects of vitamin C on testicular and seminal characteristics of Markhoz goats. Iranian Journal of Veterinary Research. Vol. 11, No. 3, Ser. No. 32, pp: 267-272.
13
Forouzanfar, M.; Sharafi, M.; Hosseini, S.M.; Ostadhosseini, S.; Hajian, M. and Hosseini, L., 2010. In vitro comparison of egg yolk-based and soybean lecithin-based extenders for cryopreservation of ram semen. Theriogenology. Vol. 73, pp: 480-487.
14
Fukui, Y.; Kohno, H.; Togari, T.; Hiwasa, M. and Okabe, K., 2008. Fertility after artificial insemination using a soybean-based semen extender (AndroMed) in sheep. Journal of Reproduction and Development. Vol. 73, pp: 480-487.
15
Gil, J.; Januskauskas, A.; Haard, M.C.; Haard, M. and Johanisson, A. Soderquist, L., 2000. Functional Sperm Parameters and Fertility of Bull Semen Extended in Biociphos Plus® and Triladyl®. Reproduction in Domestic Animals. Vol. 35. pp: 69-77.
16
Gil, J.; Rodriguez-Irazoqui, M.; Lundeheim, N.; Soderquist, L. and Rodriguez-Martinez, H., 2003. Fertility of ram semen frozen in Bioexcell and used for cervical artificial insemination. Theriogenology. Vol, 59,
17
pp: 1157-1170.
18
Graham, J. and Foote, R., 1987. Effect of several lipids, fatty acyl chain length, and degree of unsaturation on the motility of bull spermatozoa after cold shock and freezing. Cryobiology. Vol. 24, pp: 42-52.
19
Hinsch, E.; Hinsch, K.D.; Boehm, J.; Schill, WB. and Mueller-Schloesser, F., 1997. Functional Parameters and Fertilization Success of Bovine Semen Cryopreserved in Egg Yolk Free and Egg Yolk Containing Extenders. Reproduction in Domestic Animals. Vol, 32, pp: 143-149.
20
Kasimanickam, R.; kasimanickam, V.; Tibary, A. and Pelzer, K., 2011. Effect of semen extenders on sperm parameters of ram semen during liquid storage at ۴°C. Small Ruminant Research. Vol. 99, No. 2-3, pp: 208-213.
21
Maia, M.S.; Bicudo, S.D.; Sicherle, C.C.; Rodello, L. and Gallego, I.C.S., 2010. Lipid peroxidation and generation of hydrogen peroxide in frozen-thawed ram semen cryopreserved in extenders with antioxidants. Anim Reprod Sci. Vol. 122, pp: 118-123.
22
Maxwell, W.M.C. and Watson, P.F., 1996. Recent progress in the preservation of ram semen. Animal Reproduction Science. Vol. 42, No. 1-4, pp: 55-65.
23
Moussa, M.; Martinet, V.; Trimeche, A.; Tainturier, D. and Anton, M., 2002. Low density lipoproteins extracted from hen egg yolk by an easy method: cryoprotective effect on frozen–thawed bull semen. Theriogenology. Vol. 57, pp: 1695-1706.
24
Paulenz, H.; Soderquist, L.; Perez-Pe, R. and Berg,
25
K.A., 2002. Effect of different extenders and storage temperatures on sperm viability of liquid ram semen. Theriogenology. Vol. 57, No. 2, pp: 823-836.
26
Perez-Garnelo, S.; Oter, M.; Borque, C.; Talavera, C.; Delclaux, M. and Martinez-Nevado, E., 2006. Post-thaw viability of European Bison (Bison Bonasus) semen frozen with extenders containing egg yolk or lipids of plant origin and examined with a heterologous in vitro fertilization assay. J Zoo and Wildlife Med. Vol, 37, pp: 116-125.
27
Phillips, P.H., 1939. Preservation of bull semen. Journal of biological chemistry. Vol, 130, pp: 415.
28
Sharafi, M.; Forouzanfar, M.; Hosseini, S.M.; Hajian, M.; Ostadhosseini, S. and Hosseini, L., 2009. In vitro comparison of soybean lecithin based-extender with commercially available extender for Ram semen cryopreservation. International J Fert Steril. Vol, 3,
29
pp: 149-152.
30
Watson, P., 1976. The protection of ram and bull spermatozoa by the low density lipoprotein fraction of egg yolk during storage at 5 C and deep-freezing. Journal of thermal biology. Vol. 1, pp: 137-141.
31
ORIGINAL_ARTICLE
مدل سازی اثر توزیع جغرافیایی جربیل بزرگ (Rhombomis opimus) بر پراکنش پشه خاکی Phlebotomus papatasi در استان گلستان
امروزه شناسایی تأثیر توزیع و پراکنش جغرافیایی گونه هایی که به عنوان مخازن عوامل بیماریزا به انسان می باشند، به منظور برنامه ریزی حفاظتی و کنترل بیماری ها از طریق روش های زیست-اکولوژیکی اجتناب ناپذیر است. هدف این مطالعه، ارزیابی اثرات توزیع جغرافیایی جربیل بزرگ (Rhombomis opimus)، به عنوان مخزن تک سلولی Lishmania major، بر توزیع جغرافیایی پشه خاکی (Phlebotomus papatasi)، به عنوان ناقل اصلی این انگل مولد لیشمانیوزجلدی روستایی، در استان گلستان می باشد. برای این منظور 378 نقطه ثبت شده از حضور این گونه پشه خاکی و 6 متغیر محیط زیستی شامل: اقلیم، ارتفاع، شاخص پوشش گیاهی، تیپ خاک، توزیع جغرافیایی و مطلوبیت زیستگاه جربیل بزرگ، به عنوان متغیرهای مستقل انتخاب شدند. سپس مدل سازی توزیع جغرافیایی این پشه خاکی، با استفاده از نقاط حضور آن و متغیرهای محیط زیستی، به کمک نرم افزار MaxEnt به روش بیشینه آنتروپی انجام گرفت. نتایج نشان داد تعدادی از متغیرهای محیط زیستی، از جمله متغیرهای توزیع جغرافیایی و مطلوبیت زیستگاه جربیل بزرگ بیش ترین تأثیر (89/3%) را در توزیع جغرافیایی گونه پشه فلبوتوموس پاپاسی داشته اند. درحالی که دیگر متغیرها باهم تأثیر نسبتاً کم (10/7%) را دارا بودند. براساس مدل سازی انجام شده در این تحقیق، زیستگاه این پشه خاکی به صورت پیوسته در شمال استان گلستان می باشد، به طوری که حدود 12/5 درصد از سطح استان گلستان به عنوان زیستگاه مطلوب این گونه پیش بینی شده اند. این پیش بینی می تواند در ارزیابی آسیب پذیر بودن مناطق به بیماری و اتخاذ استراتژی های پیشگیرانه و کنترل بیماری موثر باشد.
http://www.aejournal.ir/article_61442_411d20f78e4ce1236398393fd30363ea.pdf
2017-12-22
73
80
جربیل بزرگ
مدل توزیع جغرافیایی
پشه خاکی
لیشمانیوز جلدی روستایی
محسن
احمدپور
m_ahmadpour_en@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 15739-49138
AUTHOR
حسین
وارستهمرادی
hvarasteh2009@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 15739-49138
LEAD_AUTHOR
حمیدرضا
رضایی
rezaei@gau.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 15739-49138
AUTHOR
محمدعلی
عشاقی
moshaghi@tums.ac.ir
4
استاد گروه حشره شناسی پزشکی و مبارزه با ناقلین، دانشکده بهداشت، دانشگاه علوم پزشکی تهران
AUTHOR
اباصلت
حسین زاده کلاگر
acolagar@yahoo.com
5
استاد گروه زیستشناسی سلولی و مولکولی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه مازندران، بابلسر
AUTHOR
احمدپور، م.؛ وارسته مرادی، ح.؛ رضایی، ح.ر.؛ عشاقی، م.ع. و حسین زاده کلاگر، ا.، 1395. مدل سازی توزیع جغرافیایی و مطلوبیت زیستگاه جربیل بزرگ (Rhombomys opimus) با استفاده از مدل بیشینه آنتروپی در استان گلستان. فصلنامه علوم و تکنولوژی محیط زیست، پذیرفته شده برای چاپ.
1
استانداری گلستان، 1395. جغرافیای طبیعی استان. قابل دسترس در: http://golestanp.ir/moarefi.html
2
پرویزی، پ.؛ جوادیان، ع.ا. و امیرخانی، ا.، 1378. مطالعه ناقل و مخزن میزبان لیشمانیوز جلدی در ترکمن صحرا، استان گلستان، شمال شرق ایران. مجله علوم پزشکی دانشگاه تربیت مدرس. سال 2، صفحات 9 تا 25.
3
حنفی بجد، ا.ع.؛یعقوبی ارشادی، م.ر.؛زمانی، ق.؛برزه کار، آ.؛ جعفری، ر. وپوراباذری، غ.ر.، 1385. جنبه های اپیدمیولوژیک لیشمانیوز جلدی در شهرستان حاجی آباد استان هرمزگان، سال 1382. مجله علوم پزشکی هرمزگان. سال 10، شماره 1، صفحات 63 تا 70.
4
راثی، ی. و حنفی بجد، ا.ع.، 1385. پشه خاک ها، ناقلین لیشمانیوزها. نوآوران علم. چاپ اول. تهران.
5
رضا،ج.؛محبعلی، م.؛دهقان دهنوی، ع.ر.؛سلیمانی، ح.؛اخوان، ا.ا.؛حجاران، ه.؛ دهقانشادکا، ع. وفتاحی، ج.، 1386. اپیدمیولوژی لیشمانیوز جلدی در شهر بافق، یزد سال 1384. مجله دانشگاه علوم پزشکی و خدمات بهداشتی- درمانی شهید صدوقی یزد. سال 15، شماره 2، صفحات 76 تا 83.
6
روشن قلب، م. و پرویزی، پ.، 1390. جداسازی و تهیین هویت انگل لیشمانیا ماژور و لیشمانیا تورانیکا در پشه خاکی فلبوتوموس پاپاسی استان گلستان. مجله علوم پزشکی مازندران. سال 12، شماره 1، صفحات 74 تا 83.
7
ضیایی، ه.، 1387. راهنمای صحرایی پستانداران ایران. کانون آشنایی با حیات وحش. چاپ دوم. تهران. 432 صفحه.
8
عزیزی، ک.؛ راثی، ی.؛ جوادیان، ع.ا.؛ یعقوبی ارشادی، م.ر.؛ جلالی، م. و کلانتری، م.، 1387. مطالعه فن و بیواکولوژی ناقلین لیشمانیوز (پشه های خاکی های فلبوتومینه) شهرستان نورآباد ممسنی، استان فارس. مجله ارمغان دانش. سال 13، شماره های 3 و 4، صفحات 101 تا 110.
9
کاورزاده، ف.، 1382. مطالعه اکولوژیکی پشه خاکی ها در یک کانون لیشمانیوز احشایی، شهرستان اهر، استان آزربایجان شرقی. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه علوم پزشکی تهران.
10
ندیم، ا.ح.؛ محبعلی، م.؛ جوادیان، ع.ا. و مومنی، ع.ض.، 1388. انگل لیشمانیا و لیشمانیوزها. مرکز نشر دانشگاهی. چاپ اول. تهران.
11
همزوی، ی.؛ صبحی، س.ا. و رضایی، م.، 1387. ویژگی های اپیدمیولوژیک لیشمانیوز جلدی بیماران مراجعه کننده به مراکز بهداشتی- درمانی استان کرمانشاه (1380-85). فصلنامه علمی پژوهشی دانشگاه علوم پزشکی کرمانشاه. سال 13، شماره 2، صفحات 151تا 161.
12
Abai, M.R.; Oshaghi, M.A.; Tajedin, L.; Rassi, Y. and Akhavan, A., 2010. Geographical distribution and ecological features of the great gerbil subspecies in the main zoonotic cutaneous leishmaniasis foci in Iran. Asian Pacific Journal of Tropical Medicine. Vol. 3, pp: 800-803.
13
Akhavan, A.A.; Mirhendi, H.; Khamesipour, A.; Alimohammadian, M.H.; Rassi, Y.; Bates, P.; Kamhawi, S.; Valenzuela, J.G.; Arandian, M.H.; Abdoli, H.; Jalali zand, N.; Jafari, R.; Shareghi, N.; Ghanei, M. and Yaghoobi-Ershadi, M.R., 2010. Leishmania species: Detection and identification by nested PCR assay from skin samples of rodent reservoirs. Experimental Parasitology. Vol. 126, No. 4, pp: 552-556.
14
Anderson, R.P.; Lew, D. and Peterson, A.T., 2003. Evaluating predictive models of species distributions: criteria for selecting optimal models. Ecological Modeling. Vol. 162, pp: 211-232.
15
Bean, W.T.; Prugh, L.R.; Stafford, R.; Butterfield, H.S.; Westphal, M. and Brashares, J.S., 2014. Species distribution models of an endangered rodent offer conflicting measures of habitat quality at multiple scales. Journal of Applied Ecology. Vol. 51, pp: 1116-1125.
16
Belen, A.; Kucukyildirim, S. and Alten, B., 2011. Genetic structures of sandfly (Diptera: Psychodidae) populations in a leishmaniasis endemic region of Turkey. Journal of Vector Ecology. Vol. 36, pp: 32-48.
17
Doroudgar, A. and Dehghani, R., 1996. A study of wild rodents fauna and their biological activities (Cutaneous Leishmaniasis reservoirs) in the desert region of Kashan, 1996. Feyz, Kashan University Medical Science Health Service. Vol. 15, pp: 56-64.
18
Doroudgar, A.; Asmar, M.; Razavi, M.R. and Doroodgar, M., 2009. Identifying the type of cutaneous leishmaniasis in patients, reservoirs and vectors by RAPD-PCR in Aran & Bidgol district of Esfahan Province during 2006-7. Feyz, Kashan University Medical Science Health Service. Vol. 2, pp: 141-146.
19
Gage, K.L. and Kosoy, M.Y., 2004. Natural history of plague: perspectives from more than a century of research. Annual Review of Entomology. Vol. 50, pp: 505-528.
20
Giovanelli, J.G.R.; De Siqueira, M.F.; Haddad,
21
C.F. B. and Alexandrino, J., 2010. Modeling a spatially restricted distribution in the Neotropics: how the size of calibration area affects the performance of five presence-only methods. Ecological Modelling. Vol. 221, pp: 215-224.
22
Hatami, H.; Seyed Nozadi, M.; Majlesi, F.; Eftekhar Ardabili, H.; Razavi, S.M. and Parizadeh, S.M.J., 2013. Comprehensive book of public health. Arjmand. Tehran, Iran. pp: 1053-1392.
23
Hoshino, B.; Ganzorig, S.; Sawamukai, M.; Kawashima, K.; Baba, K.; Kai, K. and Nurtazin, S., 2014. The impact of land cover change on patterns of zoogeomorphological influence: Case study of zoogeomorphic activity of Microtus brandti and its role in degradation of Mongolian steppe. IGARSS. Vol. 978, pp: 3518-3521.
24
Kearney, M. and Porter, W.P., 2009. Mechanistic niche modelling: combining physiological and spatial data to predict species’ ranges. Ecology Letters. Vol. 12,
25
pp: 334-350.
26
Khaleghizadeh, A. and Javidkar, M., 2007. Past and present population and rodent diet of the Lesser Kestrel (Falco Naumanni) in northern Iran. Falco. Vol. 29,
27
pp: 12-16.
28
Lay, D.M., 1967. A study of the mammals of Iran resulting from the street expedition of 1962-1963. Field zoologist.
29
Vol. 54, pp: 1-282.
30
Macdonald, D., 1984. The encyclopedia of mammals. Fact on File Publications. New York.
31
Mapelli, F.J. and Kittlein, M.J., 2009. Influence of patch and landscape characteristics on the distribution of the subterranean rodent Ctenomys porteousi. Landscape Ecology. Vol.24, pp: 723-733.
32
Mirzaei, A.; Rouhani, S.; Taherkhani, H.; Farahmand, M.; Kazemi, B.; Hedayati, M.; Baghaei, B.; Davari, E. and Parvizi, P., 2011. Isolation and detection of Leishmania species among naturally infected Rhombomis opimus, a reservoir host of zoonotic cutaneous leishmaniasis in Turkemen Sahara, North East of Iran. Experimental Parasitology. Vol. 129, No. 4, pp: 375-80.
33
Misonne, X., 1959. Analysis zoogeographique des mammiferes de l’Iran. Memoires de l’Institut Royal des Sciences Naturelles de Belgique, Deuxième Série. Vol. 59, pp: 1-157.
34
Mohebali, M.; Javadian, E.; Yaghoobi-Ershadi, M.R.; Akhavan, A.A.; Hajjaran, H. and Abai, M.R., 2004. Characterization of leishmania infection in rodents from endemic areas of the Islamic Republic of Iran. Eastern Mediterranean Health Journal. Vol. 10, pp: 591-599.
35
Nowak, R., 1999. Walker’s mammals of the world. Johns Hopkins University Press. Baltimore MD.
36
Oshaghi, M.A.; Rasolian, M.; Shirzadi, M.R.; Mohtarami, F. and Doosti, S., 2010. First report on isolation of Leishmania tropica from sandflies of a classical urban cutaneous leishmaniasis focus in southern Iran. Experimental Parasitology. Vol. 126, No. 4, pp: 445-450.
37
Parr, S.; Collin, P.; Silk, S.; Wilbraham, J.; Williams, N.P. and Yarar, M., 1995. A baseline survey of Lesser Kestrels Falco naumanni in central Turkey. Biological Conservation. Vol. 72, pp : 45-53.
38
Parvizi, P.; Javadian, E.; Assmar, M.; Naddaf, S.R. and Amirkhani, A., 1998. A survey on the host reservoirs of cutaneous leishmaniasis in Turkemen Sahara area, Iran. Parasitology International. Vol. 47, No. 1, pp: 186.
39
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire,R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological Modeling. Vol. 190, pp: 231-259.
40
Pollitzer, R., 1966. Plague and plague control in the Soviet Union. Fordham University, Bronx, NY.
41
Rassi, Y.; Oshaghi, M.A.; Azani, S.M.; Abaie, M.R.; Rafizadeh, S.; Mohebai, M.; Mohtarami, F. and Zeinali, M.K., 2011. Molecular detection of leishmania infection due to Leishmania major and Leishmania turanica in the vectors and reservoir host in Iran. Vector-Borne and Zoonotic Diseases. Vol. 11, No. 2, pp: 145-150.
42
Rassi, Y.; Sofizadeh, A.; Abai, M.R.; Oshaghi, M.A.; Rafizadeh, S.; Mohebail, M.; Mohtarami, F. and Salahi, R., 2008. Molecular detection of Leishmania major in the vectors and reservoir hosts of cutaneous leishmaniasis in Kalaleh District, Golestan Province, Iran. Iranian Journal fo Arthropod-Borne Disease. Vol. 2, pp: 21-7.
43
Reithinger, R.; Dujardin, J.C.; Louzir, H.; Pirmez, C.; Alexander, B. and Brooker, S., 2007. Cutaneous leishmaniasis. The Lancet Infectious Diseases. Vol. 7,
44
pp: 581-596.
45
Siahsarvie, R. and Darvish, J., 2008. Rodents diversity of central desert of Iranian plateau. Hystrix. Vol. 18, No. 1,
46
Strelkova, M.V.; Eliseev, L.N.; Ponirovsky, E.N.; Dergacheva, T.I.; Annacharyeva, D.K.; Erokhin, P.I. and Evans, D.A., 2001. Mixed leishmanial infections in Rhombomys opimus: a key to the persistence of Leishmania major from one transmission season to the next. Annals of Tropical Medicin and Parasitology. Vol. 95, pp: 811-9.
47
Wardrop, N.A., 2016. Integrated epidemiology for vector-borne zoonoses. Transactions of the Royal Society of Tropical Medicine and Hygiene. Vol. 110, pp: 87-89.
48
Yaghoobi-Ershadi, M.R. and Javadian, E., 1996. Epidemiological study of reservoir hosts in an endemic area of zoonotic cutaneous leishmaniasis in Iran. Bulletin of the World Health Organisation. Vol. 74, pp: 587-590.
49
Yaghoobi-Ershadi, M.R.; Akhavan, A.A.; Zahraei Ramazani, A.V.; Abai, M.R.; Ebrahimi, B. and Vafaei Nezhad, R., 2003. Epidemiological study in a new focus of cutaneous leishmaniasis in the Islamic Republic of Iran. Eastern Mediterranean Health Journal. Vol. 9, pp: 816-26.
50
Zhang, L.; Ma1, Y. and Xu, J., 2013. Genetic differentiation between sandfly populations of Phlebotomus chinensis and Phlebotomus sichuanensis (Diptera: Psychodidae) in China inferred by microsatellites. Parasites & Vectors. Vol. 6,
51
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی انگلهای کرمی دستگاه گوارش در جوندگان شهرستان سقز،استان کردستان
جوندگان مخازن مهمی برای تعدادی از بیماری های مشترک بین انسان و حیوانات هستند که در انتقال و انتشار بیماری های عفونی نقش مهمی ایفا میکنند.با توجه به نقش جوندگان در انتقال بیماری به انسان و حیوان این مطالعه به منظور بررسی آلودگی به انگلهای متازوئن دستگاه گوارش جوندگان در شهرستان سقز، طراحی گردید. در یک مطالعه مقطعی با استفاده از تلههای زنده گیر، 138 سر جونده (10 سر الوبیکوس لوتسنس، 30 سر میکروتوس سوشیالیس، 49 سر موس موسکولوس، 10 سر رتوس رتوس، 7 سر مریونس لیبیکوس و 32 سر رتوس نروژیکوس) از شهرستان سقز صید و از نظر آلودگی به کرمهای انگلی دستگاه گوارش مورد بررسی قرار گرفتند. 58 درصد از جوندگان آلوده، حداقل به یک گونه کرم انگلی بودند. میزان آلودگی در گونههای مختلف به ترتیب 90 درصد در میکروتوس سوشیالیس، 85/7 درصد در مریونس لیبیکوس،70 درصد در الوبیکوس لوتسنس و رتوس رتوس، 46/9 درصد در رتوس نروژیکوس و 36/7 درصد در موس موسکولوس گزارش گردید. میزان آلودگی در جوندگان ماده (75%) به طور معنیداری بیش تر از نرها (50%) بود (0/005=P). میزان آلودگی گونههای مختلف جوندگان به کرم های انگلی به ترتیب عبارتند از: سیفاسیا اوبولاتا 37/7 درصد، آسپیکولاریس تتراپترا 30 درصد، نیپوسترونژیلوس برازیلینسیس 20/3 درصد، سیفاسیا موریس 10/1 درصد، سیفاسیا مزوکریکتی 9/4 درصد، رودنتولیپس نانا 5/8 درصد، پروتوسپیرورا موریکولا 5/1 درصد، هیمنولیپس دیمینوتا 4/3 درصد، کاتنوتنیا پوسیلا 3/6 درصد و نوزاد تنیا تنیهفورمیس 2/2 درصد. نتایج نشان داد جوندگان مخازن مهم انگلها در منطقه هستند. به این دلیل کنترل جوندگان با روشهای مطمئن بیش از پیش اهمیت دارد. این مطالعه اولین گزارش از وضعیت آلودگی جوندگان منطقه به انگلهای کرمی دستگاه گوارش میباشد.
http://www.aejournal.ir/article_61476_d8adbdda7fa6d5b4d078dea0893d6b4a.pdf
2017-12-22
81
84
کرم
جونده
متازئن
دستگاه گوارش
سقز
محسن
رشیدی قشلاق
mohsen.rashidi1368@gmail.com
1
دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، صندوق پستی: 165
AUTHOR
موسی
توسلی
mtavassoli2000@yahoo.com
2
دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، صندوق پستی: 165
LEAD_AUTHOR
بیژن
اسمعیل نژاد
b_esmaeilnejad@yahoo.com
3
بخش پاتوبیولوژی،دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، صندوق پستی: 165
AUTHOR
اسلامی، ع.، 1387. کرم شناسی دامپزشکی نماتودها و آکانتوسفالا. چاپ دوم. انتشارات دانشگاه تهران. جلد سوم. صفحات 174تا 177.
1
اسلامی، ع.، 1387. کرمشناسی دامپزشکی سستودها. چاپ چهارم. انتشارات دانشگاه تهران. جلد دوم. صفحات 109تا110.
2
راستی، س.؛ مؤبدی، ا.؛ دهقانی، ر.؛ درودگر، ع. و اربابی، م.، 1376. اپیدمیولوژی انگل های روده ای موش های صحرایی و خانگی شهرستان کاشان. فصلنامه فیض. شماره20، صفحات 102تا 108.
3
حسن پور، ح.؛ مولوی، غ.ر، محبعلی، م.، 1392. بررسی انگلهای کرمی زئونوز در موشهای رتوس مناطق شهری شمال استان خوزستان. مجله دانشگاه علوم پزشکی ایلام. سال21، صفحات 46 تا 52.
4
غلامی، ش.؛ متول، ف.؛ موبدی، ا. و شهابی، س.، 1381. بررسی انگلهای کرمی روده ای جوندگان در مناطق شهری و نواحی مرکزی استان مازندران در طی سالهای 76 الی 78. مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی مازندران. سال12، شماره 35، صفحات 67 تا 73.
5
محبعلی، م.؛رضایی، ح.؛فرهناک، ع. و کنعانی نوتاش، ا. 1376. بررسی آلودگیهای انگلی (کرمی و خارجی) جوندگان شهرستان مشکین شهر و اهمیت بهداشتی آن ها. مجله دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران. سال 52، شماره 3، صفحات 23 تا 26.
6
نعمتالهی،ا.؛ مقدم، غ.؛ جمالی، ر. و نیازپور، ف. 1385. بررسی انگلهای کرمی و خارجی جوندگان شهرستان تبریز. مجله دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران. دوره 61 ، شماره 3، صفحات 265 تا 268.
7
Azizi, K.; Davari, B.; Kalantari, M. and Fekri, S., 2011. Gerbillid Rodents Fauna (Muridae: Gerbillinae) and detection of reservoir hosts of Zoonotic Cutaneous Leishmaniasis using a Nested-PCR technique in Jask City in Hormozgan Province in 2008; Sci. J. Kurdistan. Univ. Med. Sci. Vol. 16, No. 2, pp: 66-76.
8
Dehghani, R.; Seyedi, H.R.; Dehqan, S. and Sharifi,
9
H., 2013. Geographical distribution of mouse and mouse borne diseases in Iran. Feyz. Vol. 17, No. 2, pp: 203-219.
10
Dorodgar, A. and Dehghani, R., 2000. A study o wild rodent's fauna and their biological activities in the desert region of Kashan. Feyz. Vol. 4, No. 15, pp: 56-64.
11
Kia, E.B.; Homayouni, M.M.; Farahnak, A.; Mohebali, M. and Shojai, S., 2001. Study of endoparasites of rodents and their zoonotic importance in Ahvaz, South West Iran. Iranian J. Publ. Health. Vol. 30, No. 1-2, pp: 49-52.
12
Kia, E.B.; Shahryary-Rad, E. and Mohebali, M., 2010. Endoparasites of rodents and their zoonotic importance in Germi, Dashte-Mogan, Ardabil Province, Iran. Iranian. J. Parasitol. Vol. 5, No. 4, pp: 15-20.
13
Khaghani, R.; Mohebali, M. and Farivar, L., 2007. The economic and health impact of rodent in urban zone and harbours and their control method. J. Artesh.Univ. Med. Sci. Vol. 4, No. 4, pp: 1071-1078.
14
Nateghpour, M.; Mohebali, M. and Farivar, L., 2015. Endoparasites of Wild Rodents in Southeastern Iran. J. Arthropod-Borne. Dis. Vol. 9, Vo.1, pp: 1-6.
15
Pakdel, N.; Naem, S.; Rezaei, F. and Chalehchaleh,
16
A.A., 2013. A survey on helminthic infection in mice (Mus musculus) and rats (Rattus norvegicus and Rattus rattus) in Kermanshah, Iran. Vet. Res. Vol. 4, No. 2, pp: 105-109.
17
Yousefi, A.; Eslami, A.; Mobedi, I.; Rahbari, S. and Ronaghi, H., 2014. Helminth infections of House Mouse (Musmusulus) and Wood Mouse (Apodemussylvaticus) from the Suburban Areas of Hamadan City, Western Iran. Iranian. J. parasitol. Vol. 9, No. 4, pp: 511-518
18
ORIGINAL_ARTICLE
تداخل اثر سیستم هیستامینرژیک و عصاره آبی زرشک بر درد ناشی از فرمالین در موش های صحرایی نر
میوه زرشک (Berberis vulgaris L.) در طب سنتی ایران به عنوان یک ماده تسکین دهنده درد معرفی شده است. این پژوهش با هدف بررسی تداخل اثر سیستم هیستامینرژیک و عصارة آبی گیاه زرشک بر درد ناشیازفرمالیندر موشهایصحرایی انجام شد. تعداد 48 سر موش صحرایی نر نژاد ویستار با وزن 250-220 گرم و در گروههای 6 تایی شامل: گروه شاهد (سالین نرمال+ تزریق کفپایی فرمالین 1%)، 3 گروه تیمار با عصاره آبی زرشک (75، 150 و 300 میلیگرم به کیلوگرم وزن بدن)، گروه تیمار با پیریلامین، آنتاگونیست H1 هیستامینی، (10 میلیگرم به کیلوگرم وزن بدن) بهتنهایی، گروه پیش تیمار با پیریلامین (10 میلیگرم به کیلوگرم وزن بدن) + عصاره آبی زرشک (300 میلیگرم به کیلوگرم وزن بدن)، گروه تیمار با فاموتیدین، آنتاگونیست H2 هیستامینی (20میلیگرم به کیلوگرم وزن بدن) بهتنهایی، گروه پیش تیمار با فاموتیدین (20میلیگرم به کیلوگرم وزن بدن) + عصاره آبی زرشک (300 میلیگرم به کیلوگرم وزن بدن) استفاده شدند. برای ارزیابی درد از آزمون فرمالین و برای تجزیه و تحلیل دادهها از آنالیز واریانس یکطرفه و سپس آزمون تکمیلی دانکن استفاده شد. تزریق داخل صفاقی عصاره آبی زرشک موجب کاهش معنیدار (0/05>p) پاسخ درد در مرحله دوم درد فرمالینی گردید. پیش تزریق پیریلامین و فاموتیدین و سپس عصاره آبی زرشک موجب تقویت پاسخ ضد دردی عصاره آبی زرشک در مرحله دوم درد فرمالینی گردید (0/05>p). نتایج نشان داد کهعصاره آبی زرشک احتمالاً با تقویت قدرت کاهش دهندگیدرد توسط آنتاگونیست هایهیستامینی به ویژه آنتاگونیست گیرنده H1، اثرات ضد دردی خود را اعمال نموده است.
http://www.aejournal.ir/article_61478_06b4484148fca35d65f84d1bdf766ea3.pdf
2017-12-22
85
94
درد فرمالینی
عصاره آبی زرشک
سیستم هیستامینرژیک (گیرنده H1 و H2)
موش صحرایی
علی
مجتهدین
mojtahedin_dvsc@yahoo.com
1
بخش فیزیولوژی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی مغان، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
LEAD_AUTHOR
میترا
قلی زاده نیک پی
mi.gholizade@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی مغان، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
شاهین
حاجی قهرمانی
hajighahramani@yahoo.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی مغان، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
اربابیان، ص.؛ ایزدی، ح.ر.؛ قشونی، ح.؛ شمس، ج.؛ زردوز، ح.؛ کمالی نژاد، م.؛ صحرایی، ه. و نوروززاده، ع.، 1388. تأثیر عصاره آبی گیاه زعفران (Crocus Sativus) بر درد مزمن ناشی از آزمون فرمالین در موش های کوچک آزمایشگاهی ماده. مجله پزشکی کوثر. دوره 14، شماره 1، صفحات 11 تا 18.
1
اژدری زرمهری، ح.؛ ارمی، ا.؛ قاسمی، ا. و دادی سلمانی، م.، 1391. استرس مزمن ناهماهنگ ترتیبی رفتارهای دردی ناشی از آزمون فرمالین را در موش صحرایی نر افزایش می دهد. انجمن فیزیولوژی و فارماکولوژی ایران. دوره 16، شماره 4، صفحات 372 تا 379.
2
ایمانی، ف.، 1392. فصلنامه علمی و پژوهشی بی هوشی و درد. دوره 3، شماره3، صفحات 133 تا 134.
3
بهوندی، ف.، 1395. بررسی اثر ضددرد آلوپاتادین در موش صحرایی با روش آزمون فرمالین. پایان نامه دکتری عمومی رشته داروسازی، دانشگاه علوم پزشکی جندی شاپور، اهواز.
4
تمتاجی، ا.ر.؛ طلائی، ع.؛ تخت فیروزه، م.؛ حمیدی، غ. و تقی زاده، م.، 1393. بررسی اثر ضد دردی عصاره آبی میوه سنجد در موش های صحرایی. دو ماه نامه علمی-پژوهشی فیض. دوره 18، شماره 4، صفحات 308 تا 316.
5
تمدن فرد، ا. و عرفان پرست، ا.، 1388. اثر تزریق داخل صفاقی ویتامین C بر درد و خیز ناشی از فرمالین و هیستامین در موش های صحرایی. مجله دامپزشکی ایران. دوره 5، شماره 1، صفحات 15 تا 24.
6
تمدن فرد، ا.؛ عظیم پوران، ا. و بهجت، ب.، 1383. تاثیر مرکزی هیستامین بر درد فرمالینی در خرگوش: نقش سیستم اپیوئیدی، مجله دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران. دوره 61، شماره 1، صفحات 83 تا 90.
7
تمدن فرد، ا. و مجتهدین، ع.، 1383. اثر تزریق داخل صفاقی سایمتیدین بر پاسخ درد ناشی از فرمالین در موش های سوری. مجله دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران، دوره 59، شماره 4، صفحات 373 تا 378.
8
تمدن فرد، ا. و مجتهدین، ع.، 1384. مطالعه اثر کلرفنیرآمین داخل صفاقی بر پاسخ درد ناشی از فرمالین و ارتباط آن با سیستم اپیوئیدی در موش های سوری. مجله دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران، دوره 60، شماره 4، صفحات 363 تا 368.
9
خیاط نوری، م.ه.؛ محمودی، ج. و حسینچی قره آقاجی، م.، 1388. اثر وراپامیل، نیفدپین و دیلتیازم بر پاسخ درد ناشی از فرمالین در موش سوری. مجله دامپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی واحد تبریز، دوره 3، شماره 3، صفحات 555 تا 612..
10
روغنی، م.؛ بلوچ نژادمجرد، ت. و امیری، خ.، 1389. بررسی اثر ضد دردی تجویز دراز مدت فلاونوئید هسپرتین در موش صحرایی دیابتی: شواهد رفتاری. مجله علوم پزشکی مدرس. دوره 13، شماره 2، صفحات 11 تا 21.
11
طاهریانفرد، م.؛ گودرزی، ص. و فاضلی، م.، 1388. بررسی اثر تزریق داخل بطن مغزی موسیمول و پیکروتوسین بر شدت درد در طی سیکل استروس. مجله دامپزشکی ایران، دوره 5، شماره 2، صفحات 40 تا 49.
12
فرزین، د.؛ اصغری، ل. و نوروزی، م.، 1379. اثر آگونیست ها و آنتاگونیست های مختلف گیرنده هیستامینی بر آستانه درد ایجاد شده با صفحه داغ و Writhing شکمی در موش ها. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. جلد ۱۰، شماره ۲۸، صفحات 40 تا 54.
13
قوجق، د. و صفری، ی.، 1381. یک روش ساده برای اندازهگیری هیستامین و فعالیت آنزیم هیستسدین دکربوکسیلاز در مغز موش آزمایشگاهی، مجله دانشگاه علوم پزشکی و خدمات بهداشتی درمانی همدان. سال 9، شماره 2، شماره مسلسل 24، صفحات 29 تا 34.
14
گایتون، آرتورسی.، 2016. فیزیولوژی پزشکی گایتون/هال. ترجمه ابوالفضل ارجمند، 1394، چاپ اول، تهران: نشر بشری. جلد 2، صفحات 741 تا 808.
15
مجتهدین، ع.، 1395. بررسی اثرات محیطی اسانس لیموترش (Citrus limon) بر درد پیکری در رت های نر نژاد ویستار: نقش سیستم هیستامینرژیک. مجله دانشگاه علوم پزشکی فسا. سال 6، شماره 3، صفحات 399 تا 408.
16
مقدم نیا، ع.ا.؛ حسینی مطلق، ل. و جندقی جعفری، م.، 1383. بررسی اثرات ضد دردی پی پرین با استفاده از Hote-Plate و تست فرمالین در موش. مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی گرگان. سال 6، شماره 13، صفحات 8 تا 16.
17
نصری، س.، 1391. مروری بر کاربرد ضد دردی گیاهان دارویی در ایران. مجله طب سنتی اسلام و ایران. سال 3، شماره 3، صفحات 293 تا 310.
18
Abd El-Wahab, A.E.; Ghareeb, D.A.; Sarhan, E.E. and Abu-Serie, M.M., 2013. In vitro biological assessment of Berberis vulgaris and its active constituent, berberine: antioxidants, anti-acetyl cholinesterase, anti-diabetic and anticancer effects. BMC Complement Altern Med. Vol. 13, pp: 218-229.
19
Amresh, G.; Reddy, G.D.; Rao, C. and Singh, P.N., 2007. Evaluation of anti-inflammatory activity of Cissampelos pareira root in rats. J Ethnopharmacol. Vol. 110, pp: 526-531.
20
Arayne, M.S.; Sultana, N. and Bahadur, S., 2007. The berberis story: Berberis vulgaris in therapeutics. Pakistan journal of pharmaceutical sciences. Vol. 20, No. 1, pp: 83-92.
21
Ashmavi, H.A.; Chambergo, F.S.; Araujo palmeira, C.C. and Paula posso, I.D., 2003. The effect of pyrilamine and cimetidine on mRNA C-fos expression and nociceptive flinching behavior in rats. Anesth Analg. Vol. 97, No. 2, pp: 541-546.
22
Changizi-Ashtiyani, S.; Najafi, H.; Jalalvandi, S. and Hosseinei, F., 2013. Protective effects of Rosa canina fruit extracts on renal disturbances induced by reperfusion injury in rats. IJKD. Vol. 7, pp: 290-298.
23
Eshraghi, A.; Movahedian Ataar, A.; Asgari, S. and Naderi, G.A., 2011. Antioxidant effect of ziziphus vulgaris, portulacaoleracea, Berberis integerima and gundeliatourne fortti on lipid peroxidation, hb glycosylation and red blood cell hemolysis. JMP. Vol. 10, pp: 80-88.
24
Fukuda, K.; Hibiya, Y. and Mutoh, M., 1999. Inhibition of activator protein 1 activity by berberine in human hepatoma cells. Planta Med. Vol. 65, pp :381-383.
25
Hamzeh-ghooshchi, N.; Tamaddonfard, E. and Farshid, A.A., 2015. Effect of microinjection of histamine into the anterior cingulate cortex on pain-related behaviors induced by formalin in rats. Pharmacological reports. Vol. 67, No. 3, pp: 593-599.
26
Hojsted, J. and Sjogren, P., 2007. Addiction to opioids in chronic pain patient: A literature review. Eur J Pain. Vol. 11, No. 5, pp: 490-518.
27
Khosrokhavar, R.; Ahmadiani, A. and Shamsa, F., 2010. Antihistaminic and Anticholinergic Activity of Methanolic Extract of Barberry Fruit (Berberis vulgaris) in the Guinea Pig Ileum. Journal of Medicinal Plants. Vol. 9, No. 35, pp: 99-105.
28
Kiasalari, Z.; Khalili, M. and Ahmadi, P., 2011. Effect of alcoholic extract of Berberis Vulgaris fruit on acute and chronic inflammation in male rats. JBMUS. Vol. 3, No. 13, pp: 28-35.
29
Kupelia, E.; Kos arb, M.; Yes iladaa, E.; Husnu, K. and Bas erb, C., 2002. A comparative study on the anti-inflammatory, antinociceptive and antipyretic effects of isoquinoline alkaloids from the roots of Turkish Berberis species. Life Sciences. Vol. 72, pp: 645-657.
30
Mirazi, N. and Hosseini, A., 2013. Evaluation of Antinociceptive Activity of Berberis Vulgaris L. Fruit’s Hydroethanolic Extract in Male Mice. Iranian Journal of Pharmaceutical Sciences. Vol. 9, No. 4, pp: 13- 20.
31
Mohebali, S.H.; Nasri, S.; Kamalinejhad, M. and Noori, A., 2011. Antinociceptive & anti-inflammatory effects of Berberis vulgaris L. root's hydroalcoholic extract and determination of it’s possible antinociceptive mechanism in male mice. Journal of Paramedical Sciences. Vol. 2, No. 4, pp: 451-461.
32
Mojtahedin, A., Tamaddonfard, E. and Zanbouri,
33
A., 2008. Effects of mepyramine and famotidine on the physostigmine-induced antinociception in the formalin testin rats. Pakistan Journal of Biological Sciences. Vol. 11, No. 22, pp: 2573-2578.
34
Mojtahedin, A., 2016. Effect of cholinergic system in antinociception induced by H1 and H2 receptor antagonists on somatic pain in rats. International Journal of Medical Research & Health Sciences. Vol. 5, No. 9, pp: 378-383.
35
Owen, J.L.; Torroella-Kouri, M. and Iragavarapu Charyulu, V., 2008. Molecular events involved in the increased expression of matrix metalloproteinase-9 by T lymphocytes of mammary tumor-bearing mice. Int J Mol Med. Vol. 21, No. 1, pp: 125-134.
36
Rosa, A.C. and Fantozzi, R., 2013. Histamine in the neurogenic inflammation. Pharmacol. Vol. 170, No. 1,
37
pp: 38-45.
38
Shamsa, F.; Ahmadiani, A. and Khosrokhavar, R., 1999. Antihistaminic and anticholinergic activity of barberry fruit (Berberis vulgaris) in the guinea-pig ileum. J Ethnopharmacol. Vol. 64, pp: 161-166.
39
Shidfar, F.; Ebrahimi, S.S.; Hosseini, S. and Heydari,
40
I., 2012. The effects of Berberis vulgaris fruit extract on serum lipoproteins, apoB, apoA-I, homocysteine, glycemic control and total antioxidant capacity in type 2 diabetic patients. Iran J Pharm Res. Vol. 11, pp: 643-652.
41
Souri, E.A.G.; Dehmobed-Sharifabadi, A.; Nazifi, A. and Farsam, H., 2004. Antioxidant activity of sixty plants from Iran. Iran J Pharm Res. Vol. 3, pp: 55-59.
42
Sjogren, P.; Thomsen, A.B. and Olsen, A.K., 2000. Impaired neuropychological performance in chronic nonmalignant pain patient receiving long-term oral opioid therapy. Journal of Pain and Symptom Management. Vol. 19, No. 2, pp: 100-108.
43
Tamaddonfard, E. and Hamzeh-Gooshchi, N., 2013. Effect of administration of histamine and itʹs H1, H2 and H3 receptor antagonists in to the primary somatosensory cortex on inflammatory pain in rats. Iran J Basic Med Sci. Vol. 17, No. 1, pp: 55-61.
44
Vidal-cantu, G.C.; Jimenez-Hernandez, M.; Rocha Gonzalez, H.I.; Villalon, C.M.; Granados-Soto, V. and Munoz-Islas, E., 2016. Role of 5-HT5A and 5-HT1B/1D receptors in the antinociception produced by ergotamine and valerenic acid in the rat formalin test. European Journal of Pharmacology. Vol. 781, pp: 109-116.
45
Zanboori, A.; Tamaddonfard, E. and Mojtahedin,
46
A., 2008. Effect of chlorpheniramine and Ranitidine on the visceral nociception induced by Acetic Acid in rats: Role of opioids system. Pakistan Journal of biological sciences. Vol. 11, No. 20, pp: 2428-2432.
47
Zarei, A.; Changizi-Ashtiyani, S.; Taheri, S. and Ramezani, M., 2015. A quick overview on some aspects of endocrinological and therapeutic effects of Berberis vulgaris L. Vol. 5, No. 6, pp: 485-497.
48
Zhou, Q.; Feng, Ch. and Ruan, Zh., 2017. Inhibitory effect of a genistein derivative on pigmentation of guinea pig skin, RSC Adv. Vol. 7, No. 13, pp: 7914-7919.
49
ORIGINAL_ARTICLE
زیستگاههای با مطلوبیت بالای دارکوب خالدار بزرگ (Dendrocopos major) اولویتی برای حفاظت جنگلهای هیرکانی
جنگلهای هیرکانی به لحاظ تنوع بیولوژیکی غنی و به دلیل ایزوله شدن جغرافیایی و داشتن فون و فلور با ارزش بالا شناخته شده هستند. با این حال این جنگلها به دلیل سطح گستردهای از فعالیتهای انسانی جزو اکوسیستمهای در معرض تهدید ایران به شمار میروند. در مطالعه حاضر از دارکوب خالدار بزرگ به عنوان یک شاخص جهت تعیین لکههای با ارزش حفاظتی بالا استفاده شده است. برای این کار ابتدا نقاط حضور گونه از سراسر استان جمع آوری شد و سپس متغیرهای محیطی مؤثر بر توزیع گونه براساس منابع منتشر شده برای ساخت مدل مطلوبیت زیستگاه آن تهیه شد. مدل نهایی به دست آمده نشان داد که عمده زیستگاههای جنگلی مناسب برای حفاظت در نیمه شرقی استان گلستان قرار گرفته است. هم چنین دو متغیر شاخص نرمال شده پوشش گیاهی (NDVI) و ارتفاع از سطح دریا تأثیرگذارترین متغیرها برای ساخت مدل نهایی مطلوبیت زیستگاه شناخته شدند. با توجه به نتایج به دست آمده در مطالعه، دو طبقه اول ارتفاعی جنگلهای خزری و جامعه درختان بلوط به همراه مناطق با تاج پوشش متراکم برای حفاظت در اولویت شناخته شدند. بنابراین نیاز است با مدیریت جنگل به منظور ایجاد مناطق جنگلی با ویژگیهای ذکر شده، باعث افزایش غنای زیستی در مناطق جنگلی شد که خود موجب پایداری جنگلها از لحاظ بوم شناختی خواهد گردید.
http://www.aejournal.ir/article_61526_4c4a45ba83565adb1dbb108a94b2a3e4.pdf
2017-12-22
95
102
زیستگاه
بوم شناسی
مکسنت
مطلوبیت زیستگاه
سهراب
مرادی
moradi_4@pnu.ac.ir
1
گروه علوم و مهندسی محیط زیست، دانشگده علوم کشاورزی، دانشگاه پیام نور، ایران
LEAD_AUTHOR
صیاد
شیخی ئیلانلو
sayyad.sheykhi@ut.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
انوشه
کفاش
anooshe.kafash@gmail.com
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
بهداروند، ن.؛ کابلی، م.؛ جباری انامیری، ب.؛ ابراهیمپور، ر.؛ اسدی آقبلاغی. م. و ایمانیهرسینی، ج.، 1393. شناسایی مناطق پرخطر و عوامل محیطی مؤثر بر حملات گرگ به دام در استان همدان با بهکارگیری روش مدلسازیMAXENT. مجله محیط زیست طبیعی. دوره 67، شماره 3، صفحات 245 تا 252.
1
پاکنیت، د.؛ همامی، م.ر.؛ ملکی، س. و توحیدی، م.، 1395. تأثیر عوامل محیطی بر پراکنش زیستگاههای مطلوب جمعیتهای زمستان گذران هوبره آسیایی در فلات مرکزی ایران. مجله بوم شناسی کاربردی. جلد 17، شماره 5، صفحات 77 تا 88.
2
تکتهرانی، ع.؛ شمساسفندآباد، ب.؛ کرمی، م. و فرهادینیا، م.ص.، 1394. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه شاه روباه (Vulpes cana) مبتنی بر فناوری دوربینهای تله ای در ایران. مجله محیط زیست جانوری. دوره 7، شماره 3، صفحات 39 تا 46.
3
تندورانزنگنه، م.؛ فاخران اصفهانی، س.؛ پورمنافی، س. و سن، ج.، 1395. ارزیابی مطلوبیت زیستگاه و وضعیت حفاظتی گونه به شدت در خطر انقراض سمندر لرستانی (Neurergus kaiseri) در استانهای لرستان و خوزستان. مجله بوم شناسی کاربردی. جلد 5، شماره 17، صفحات 11 تا 24.
4
جهانی،س. و دلبری، م.، 1388. ارزیابی و برآورد بیش ترین بارش 24 ساعته در استان گلستان. مجله مهندسی آب. دوره2، شماره 1، صفحات 13 تا 22.
5
حسینزاده، م.م.؛ اسماعیلی، ر.؛ نوحهگر، ا. و ثقفی، م.، 1388. بررسی تغییرات پوشش جنگلی در دامنههای شمالی البرز (مطالعه موردی: حدفاصل دره هراز و دره چالوس، شهرستانهای چالوس، نوشهر، نور و آمل). مجله علوم محیطی. دوره 7، شماره 1، صفحات 1 تا 20.
6
خاکی، س.؛ علیزادهشعبانی، ا.؛ کابلی، م.؛ نوری، ز. و قدیریان، ط.، 1392. مدلسازی زیستگاه پایکای افغانی (Ochotona rufescens) در ایران با تکیه بر پارامترهای اقلیمی. مجله محیط زیست طبیعی. دوره 66، شماره 2، صفحات 169 تا 180.
7
سلمانماهینی،ع.؛رشیدی،پ.؛مخدوم،م.؛ علیزاده،ا.؛میکائیلیتبریزی، ع. و وارستهمرادی،ح.، 1389. انتخاب سیستماتیک لکههای حفاظتی استان گلستان با استفاده از روش نظام ارزیابی و اولویتبندی حفاظت (CAPS). مجله پژوهشهای محیط زیست. دوره 1، شماره 1، صفحات 1 تا 12.
8
شیخیئیلانلو، ص.؛ معینالدینی، م.؛ قلیپور، م.؛ شیخی، ع. و کراچی، ه.، 1395. ارزیابی زیستگاه کوکر شکم سیاه (Pterocles orientalis) با روش آنتروپی بیشینه در پناهگاه حیات وحش شیر احمد سبزوار. محیط زیست طبیعی. دوره 67، شماره 1، صفحات 231 تا 245.
9
عطایی، ف.؛ کرمی، م. و کابلی، م.، 1391. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه تابستانه خرس قهوهای (Ursus arctos syriocus) در منطقه حفاظت شده البرز جنوبی. مجله محیط زیست طبیعی. دوره 65، شماره 2، صفحات 235 تا 245.
10
مرادی، س.؛ محمودی، ص. و شیخیئیلانلو، ص.، 1395. زیستگاههای جنگلی مناسب برای حفاظت از سنجاب ایرانی (Sciurus anomalus pallescens) در غرب استان کرمانشاه. مجله محیط زیست جانوری. دوره 8، شماره، 2، صفحات 33 تا 40.
11
مساعدی،ا.؛مرعشی،م. و کواکبی،غ.، 1388. بررسی مقایسهای خشکسالی در مناطق پرباران و کم باران (مطالعه موردی: استان گلستان). مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی. دوره 16، شماره 1، صفحات 277 تا 292.
12
منصوری،ج.، 1387. راهنمای پرندگان ایران. انتشارات فرزانه. 513 صفحه.
13
میرزایی، ر.؛ همامی، م.ر.؛ اسماعیلیساری، ع. و رضایی، ح.ر.، 1392. مدلسازی پراکنش دلیجه کوچک (Falco naumanni) در استان گلستان. مجله پژوهشهای محیط زیست. سال 4، شماره 8، صفحات 149 تا 156.
14
Adamchuk, V.; Perk, R. and Schepers. J., 2004. Application of remote sensing in site - specific management. Institute of agriculture and natural resources. University of Nebraska Cooperative Extension Precision Agriculture EC. pp: 04-702.
15
Akhani, H.; djamali, M.; Ghorbanalizadeh, A. and Ramezani, E., 2010. Plant biodiversity of hyrcanian relict forests, N Iran: an overview of the flora, vegetation, paleoecology and conservation, Pakistan Journal of Botany Impact & Description., Special Issue (S.I. Ali Festschrift). Vol. 42, pp: 231-258.
16
Angelstam, P. and Mikusinski, G., 1994. oodpecker assemblages in natural and managed boreal and lemi boreal forest, a review. Annales Zoologici Fennici. Vol. 31, pp: 157-172.
17
Anonymous., 2005. Current Status of Biodiversity Conservation and Sustainable Development in the Islamic Republic of Iran, In: National CBD Reports, I.R. Iran.
18
Bogliani, G.; Bontardelli, L.; Giordano, V.; Lazzarini, M. and Rubolini, D., 2003. Biodiversità animale degli ambienti terrestri nei Parchi del Ticino. Consorzio Parco Lombardo della Valle del Ticino. IL Guado, Corbetta, 176 p.
19
Conner, R.N. and Rudolph, D.C., 1991. Forest habitat loss, fragmentation, and red cockaded woodpecker populations. Wilson Bulletin. Vol. 103, pp: 446-457.
20
Del Hoyo, J.; Elliott, A. and Sargatal, J., 2002. Handbook of the Birds of the World. Vol. 7. Jacamars to Woodpeckers. Lynx Editions, Barcelona ISBN 84-87334-37-7. 613 p.
21
Elith, J.; Graham, C.H.; Anderson, R.P.; Dudik, M.; Ferrier, S. and Guisan, A., 2006. Novel methods improve prediction of species distributions from occurrence data. Ecography. Vol. 29, pp: 129-151.
22
Etemad, V., 1994. Estimating of quantity and quality of conclusion forestry project. M.Sc. Thesis, University of Tehran, Tehran.
23
Fahrig, L., 2003. Effects of habitat fragmentation on biodiversity. Annual Review of Ecology Evolution and Systematics. Vol. 34, pp: 487-515.
24
Felix, J., 2000. Birds of Great Britan and Europe. Caxton Publishing Group. 320 p.
25
Foley, J.A.; DeFries, R.; Asner, G.P.; Barford, C.; Bonan, G.; et al. 2005. Global Consequences of Land Use. Science. Vol. 309, pp: 570-574.
26
Gorman, G., 2004. Woodpeckers of Europe. A study of the European Picidae. Published by Bruce Coleman ISBN 1-872842-05-4. 192 p.
27
Hardersen, S.; Cerretti, S.; Hardersen, F.; Mason, G. and Nardi, M., 2004. Habitat usage of woodpeckers and nuthatch. Ricerche naturalistiche a Boscodella Fontana-Quaderni Conservazione Habitat. Vol. 3, pp: 49-59.
28
Hijmans, R.J.; Cameron, S.E.; Parra, J.L.; Jones, P.G. and Jarvis, A., 2005. Very high resolution interpolated climate surfaces for global land areas. International Journal of Climatology. Vol. 25, pp: 1965-1978.
29
Kafash, A.; Kaboli, M. and Kohler, G., 2014. Predicting the impacts of climate change on the Mesopotamian Spiny-tailed Lizard (Saara loricata): Using maximum entropy algorithm and Bioclim. Journal of Animal Biology. Vol. 1, pp: 75-82.
30
Kafash, A.; Kaboli, M. and Kohler, G., 2015. Comparison effect of future climatic change on the desert and mountain dwelling reptiles in Iran (Paralaudakia caucasia and Saara loricata). Journal of Animal Environment. Vol. 3, pp: 103-108.
31
Kafash, A.; Kaboli, M.; Kohler, G.; Yousefi, M. and Asadi A., 2016. Ensemble distribution modeling of the Mesopotamian spiny-tailed lizard (Saara loricata) in Iran, An insight into the impact of climate change. Turkish Journal of Zoology. Vol. 40, pp: 262-271.
32
Kafash, A. and Yousefi, M., 2017. Negative impacts of the future climate change on mountain dweller lacertid lizards in Iran. Journal of Natural environment (Accepted).
33
Lammertink, M.; Prawiradilaga, D.M.; Setiorini, U.; Naing, T.Z. and Duckworth, J.W., 2009. Global population decline of the Great Slaty Woodpecker (Mulleripicus pulverulentus). Biological Conservation. Vol. 142, pp: 166-179.
34
Mahmoudi, S.; Sheykhi Ilanloo, S.; Keyvanloo Shahrestanaki, A.; Valizadegan, N. and Yousefi,
35
M., 2015. Effect of human-induced forest edges on the understory bird community in Hyrcanian forests in Iran: Implication for conservation and management. Forest Ecology and Management. Vol. 382,
36
pp: 120-128.
37
Martin, K. and Eadie, J.M., 1999. Nest webs: a community-wide approach to the management and conservation of cavity nesting forest birds. Forest Ecology and Management. Vol. 115, pp: 243-257.
38
Merow, C.; Smith, M. J. and Silander, J.A., 2013. A practical guide to MaxEnt for modeling species’ distributions: what it does, and why inputs and settings matter. Ecography. Vol. 36, pp: 1058-1069.
39
Michalek, K.G. and Miettinen, J., 2003. Dendrocopos major Great Spotted Woodpecker. BWP Update. Oxford Univ. Press. Vol. 5, No. 2, pp: 101-184.
40
Mikusinski, G.; Gromadzki, M., and Chylarecki,
41
P., 2001. Woodpeckers as indicator of forest bird diversity. Conservation Biology. Vol. 15, pp: 208-217.
42
Mori, S., 2005. Foraging habitat use by the Great Spotted Woodpecker Dendrocopos major in a fragmented forest landscape. Ornithological Science. Vol. 4, pp: 179-182.
43
Naqinezhad, A.; Hamzehee, B., and Attar, F., 2008. Vegetation-environment relationships in the alder wood communities of Caspian lowlands, N. Iran (toward an ecological classification). Flora. Vol. 203, No. 7, pp: 567-577.
44
Pasinelli, G., 2000. Oaks (Quercus sp.) and only oaks? Relations between habitat structure and home range size of the middle spotted woodpecker (Dendrocopos medius). Biological Conservation. Vol. 93, pp: 227-235.
45
Peterson, R.T.; Mountfort. G. and Hollom, P., 1993. Birds of Britain and Europe. Houghton Mifflin Company. 280 p.
46
Pettorelli, N.; Vik, O.; Mysterud, A.; Gaillard, J.M.; Tucker, C.J. and Stenseth, N.C., 2005. Using the satellite derived NDVI to assess ecological responses to environmental change. Trends in ecology and evolution. Vol. 20, pp: 503-510.
47
Phillips, J.S.; Dudik, M., and Schapire, E., 2004. A maximum entropy approach to species distribution modeling. First International Conference of Machin Learning. pp: 655-662.
48
Plentovich, S.; Tucker, J.J.W. and Holler,
49
N.R., 1998. Enhancing Bachman’s Sparrow habitat via management of Red-cockaded Woodpeckers. The Journal of Wildlife Management. Vol. 62, No. 1, pp: 347-354.
50
Rajabizadeh, M.; Nagy, Z.T.; Adriaens, D.; Avci, A.; Masroor, R.; Schmidtler, J.; Nazarov, R.; Esmaeili, H. R. and Christiaens J., 2016. Alpine Himalayan orogeny drove correlated morphological, molecular, and ecological diversification in the Persian dwarf snake (Squamata: Serpentes: Eirenis persicus). Zoological Journal of the Linnean Society. Vol. 176, pp: 878-913.
51
Reed, J.M., 1990. The dynamics of Red-cockaded Woodpecker rarity and conservation. Swedish University of Agricultural Sciences, Department of Wildlife Ecology, Uppsala Report 17. 1st International Woodpecker Symposium. Uppsala. pp: 37-56.
52
Roberge, J.M. and Angelstam, P., 2006. Indicator species among resident forest birds -A cross-regional evaluation in northern Europe. Biological Conservation. Vol. 130, pp: 134-147.
53
Roberge, J.M.; Angelstam, P. and Villard, M.A., 2008. Specialised woodpeckers and naturalness in hemiboreal forests Deriving quantitative targets for conservation planning. Biological Conservation. Vol. 141, pp: 997-1012.
54
Seoane, J.; Bustamante, J. and Diaz-Delgado, R., 2004. Competing roles for landscape, vegetation, topography and climate in predictive models of bird distribution. Ecological Modelling. Vol. 171, pp: 209-222.
55
Siadati, S.; Moradi, H.; Attar, F.; Etemad, V.; Hamzehee, B. and Naqinezhad, A., 2010. Botanical diversity of Hyrcanian forests; a case study of transect in the Kheyrud protected lowland mountain forests in northern Iran. Phytotaxa. Vol. 7, pp: 1-18.
56
Soderstrom, B., 2008. Effects of different levels of green and dead tree retention on hemiboreal forest bird communities in Sweden. Ecology and Management. Vol. 257, No. 1, pp: 215-222.
57
Warren, D.L.; Glor, R.E. and Turelli, M., 2010. ENMTools: a toolbox for comparative studies of environmental niche models. Ecography. Vol. 33, pp: 607-611.
58
Wilson, C.W.; Masters, R.E. and Bukenhofer, G.A., 1995. Breeding bird response to pine-grassland restoration for Red-cockaded Woodpeckers. Journal of Wildlife Management. Vol. 59, No. 1, pp: 56-67.
59
Yousefi, M.; Ahmadi, M.; Nourani, E.; Behrooz, R.; Rajabizadeh, M.; Geniez, P. and Kaboli, M., 2015. Upward Altitudinal Shifts in Habitat Suitability of Mountain Vipers since the Last Glacial Maximum. PLoS ONE. e0138087. Doi: 10.1371/journal.pone.0138087. Vol. 10, pp: 9.
60
Yousefi, M.; Ahmadi, M.; Nourani, E.; Rezaei, A.; Kafash, A.; Khani, A.; Sehhatisabet, ME.; Adibi, M.A.; Goudarzi, F. and Kaboli, M., 2016. Habitat suitability and impacts of climate change on the distribution of wintering population of Asian Houbara Bustard (Chlamydotis macqueenii) in Iran. Bird conservation International, pp: 1-11. Doi: 10.1017/S0959270916000381.
61
Zarnowitz, J.E. and Manuwal, D.A., 1985. The effects of forest management on cavity-nesting birds in Northwestern Washington. Journal of Wildlife Management. Vol. 49, No. 1, pp: 255-263.
62
Zhen- biao, J.; Tao, W.; Jun- bao, W.; Jia- fu, H.; You qing, L.; Lin- ju, F. and Lin- sheng, L., 2008. Seasonal diet of the Great Spotted Woodpecker (Picoides major) in shelter wood plantations of Wulate Qianqi County Inner Mongolia. Forestry Studies in China. Vol. 10, pp: 119 - 124.
63
ORIGINAL_ARTICLE
خصوصیات مناطق آشیانه گذاری چکاوک کاکلی (Galerida cristata) در منطقه هرات، استان یزد
انتخاب زیستگاه لانه گذاری چکاوک کاکلی (Galerida cristata) در منطقه ای به وسعت 8000 هکتار از منطقه شکارممنوع قره تپه و پناهگاه حیات وحش بروئیه واقع در منطقه هرات، استان یزد در بهار 1393 مورد بررسی قرار گرفت. متغیرهای زیستگاهی مثل تعداد گونه های گیاهی، بافت خاک ، فاصله لانه ها از نزدیک ترین منبع آب، مزرعه و جاده در نقاط حضور گونه اندازه گیری گردید و با نقاط عدم حضور (تصادفی) مقایسه گردید. نتایج نشان داد که متوسط تعداد گونه گیاهی قیچ، درمنه و درصد خاک با بافت نه چندان نرم در مناطق حضور به طور معنی داری بالاتر از مناطق شاهد بود (0/05>P). مهم ترین فاکتورهای تأثیرگذار در انتخاب نقاط لانه گذاری توسط این پرنده تعداد گونه های گیاهی قیچ و نوع بافت خاک می باشد. با توجه به آن که گونه بروی زمین آشیانه می سازد گونه های گیاهی قیچ و درمنه استتار لازم را برای لانه و جوجه ها فراهم می کنند هم چنین لانه را در برابر تابش خورشید یا طوفان های احتمالی در منطقه حمایت کنند. احداث لانه در منطقه ای با بافت نرم خاک باعث فروپاشی لانه می شود. لذا این پرنده به طور معنی داری مکان هایی را به عنوان محل لانه گذاری انتخاب می کند که بافت خاک سخت تری داشته باشد (0/05>P). برخی از لانه ها در مزارع یونجه مشاهده شد. به نظر می رسد انتخاب این محل برای استتار بیش تر لانه بوده علاوه بر آن که حشرات داخل مزرعه منبع غذایی خوبی برای جوجه های این پرنده است.
http://www.aejournal.ir/article_61640_54af38f194474fd0ace13819fe27cd5a.pdf
2017-12-22
103
108
انتخاب زیستگاه
چکاوک کاکلی
منطقه هرات
استان یزد
شیرین
آقا نجفی
shirinaghanajafi@gmail.com
1
گروه محیط زیست، واحد میبد، دانشگاه آزاد اسلامی میبد، ایران
LEAD_AUTHOR
زهرا
غضنفری
zahraghazanfari021@gmail.com
2
گروه محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
اداره حفاظت محیط زیست خاتم. 1390 . طرح جامع مطالعاتی پناهگاه حیات وحش بروئیه، انتشارات اداره حفاظت محیط زیست یزد، چاپ اول. 294 صفحه.
1
Erdos, A., 2009. Nest-site selection and breeding ecology of Sky Larks Alaudaar vensisin Hungarian farmland. Bird Study. Vol. 56, pp: 259-263.
2
Hartley, P., 1964. Notes on the breeding biology of the Crested Lark. British Birds. Vol. 12, pp:142-144.
3
IUCN Red List of Threatened Species. 2014. Galerida cristat. Retrieved February 20, 2016, from
4
http://www.Iucnredlist.org.
5
Khaleghizadeh, A.; Tatafi, G.; Youzbashi, M. and Aghabeigi, F., 2005. Autumn Diet of the Crested Lark (Galerida cristata) in Iran. Journal of Zoology in the Middle East.vol. 35, pp: 106-112.
6
Lusk, J.; Kimberly, L.; Suedkamp, Fred. and Samuel, D.F., 2003. Lark sparrow (Chondestes grammacus) nest site selection and success in a mixed-grass prairie. The auk. Vol. 120, No. 3, pp:120-129.
7
Morgado, R.; Beja, P.; Reino, L.; Gordinho, L.; Delgado, A.; Borralho, R. and Moreira, F., 2010.Calandra Lark habitat selection: strong fragmentation effects in a grassland specialist, ActaOecologic. Vol. 36, pp: 63-73.
8
Morales, B.; Guerrero, M.; Oñate, j. and Meléndez, L., 2012. Inter-specific association and habitat use in a farmland passerine assemblage, Ecological Research. Vol. 27, No .4, pp :691-700.
9
Orbán, Z., 2004. Nest construction and roosting behaviour of a Crested Lark Galerida cristata population nesting on flat roofs in Hungary Ornis Hung. Vol. 14, pp: 1-13.
10
Shkedy, Y. and Safriel, N., 1991. Fat Reserves of an Opportunist and of a Specialist Species in the Negev Desert. The Auk. Vol. 108, No. 3, pp: 556-561.
11
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی چندشکلی آللی ژن میوستاتین و ارتباط آن با صفات رشد و لاشه در مرغ بومی مازندران
پژوهش حاضر با هدف مطالعه چندشکلی ناحیه پروموتر ژن میوستاتین و ارتباط آن با صفات رشد و لاشه در مرغ بومی مازندران انجام شد. برای این منظور تعداد 200 قطعه جوجه خروس از مرغ های بومی مازندران پرورش داده شده در شرایط یکسان، در سن 12 هفتگی کشتار شدند. صفات مورد بررسی، قبل و بعد از کشتار اندازه گیری و ثبت شدند. قبل از کشتار از تمامی پرندگان نمونه خون تهیه و استخراج DNA از نمونه ها با استفاده از کیت شرکت سیناژن صورت گرفت. سپس جایگاه مورد نظر ژن میوستاتین با استفاده از آغازگرهای اختصاصی آن تکثیر و تعیین ژنوتیپ توسط روش PCR-RFLP با آنزیم اختصاصی آن انجام گرفت. تجزیه و تحلیل داده های فنوتیپی و ژنوتیپی با استفاده از نرم افزار آماری 9.2 SAS انجام شد. فراوانی هریک از آلل های (+) و (-) در جایگاه مورد نظر ژن میوستاتین به ترتیب برابر با 0/77 و 0/23 برآورد شد. بررسی تعادل هاردی واینبرگ با استفاده از آزمون کای مربع برای ژن میوستاتین نشان داد که جمعیت مورد مطالعه در جایگاه ژنی مورد نظر در تعادل نمی باشد. نتایج نشان داد که ارتباط معنی داری بین ژنوتیپ های ژن میوستاتین با صفات وزن زنده در 12 هفتگی، وزن لاشه، وزن قلب و وزن سنگدان وجود دارد (0/05>P). براساس نتایج حاصل از این تحقیق می توان نتیجه گرفت که ژن میوستاتین می تواند در جایگاه مورد نظر به عنوان کاندید برای صفات رشد و لاشه در برنامه های اصلاح نژادی مرغ بومی مازندران مورد استفاده قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_61811_a9d6e9f06fd3a95b90e36ae1b78ce16b.pdf
2017-12-22
109
112
میوستاتین
چندشکلی
صفات
مرغ بومی
حسین
عطارچی
hossein_attarchi@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، پردیس بین الملل دانشگاه فردوسی مشهد، صندوق پستی: 64955
LEAD_AUTHOR
مجتبی
طهمورث پور
m_tahmorespur@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی دانشگاه فردوسی مشهد، صندوق پستی: 91775
AUTHOR
مجتبی
آهنی آذری
mojtaba.9@yahoo.com
3
دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 15739
AUTHOR
محمدهادی
سخاوتی
sekhavaty@um.ac.ir
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی دانشگاه فردوسی مشهد، صندوق پستی: 91775
AUTHOR
مختار
مهاجر
mokhtar_mohajer@yahoo.com
5
سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان گلستان، صندوق پستی: 85799
AUTHOR
دهقان زاده، ه.؛ میرحسینی، س.ض. و شادپرور، ع. 1383. بررسی تنوع ژنتیکی مرغان بومی ایران با استفاده از نشانگرهای RAPD. مجله پژوهش و سازندگی. شماره 62، صفحات 6 تا 9.
1
معروفی، س.؛ مردانی، ک.؛ هاشمی، ع و قادرزاده، م. 1390. بررسی چندشکلی ژن میوستاتین در مرغ های نژاد راس 308 با استفاده از روش PCR-SSCP. اولین کنگره ملی علوم و فناوری های نوین کشاورزی.
2
نقوی،م.؛قره یاضی،ب.وحسینی سالکده، ق. 1388. نشانگرهای مولکولی (چاپ سوم)، انتشارات دانشگاه تهران. 48 صفحه.
3
Bai, J.Y.; Zhang, Q. and Jia, X.P., 2006. Comparison of different foreground and background selection methods in marker-assisted introgression. Acta Genetica Sinica. Vol. 33, pp: 1073-1080.
4
Bharani Kumar, S.T.; Ahlawat, S.P.S.; Tantia, M.S. and Vijh, R.K., 2007. Genetic relationship among chicken populations of india based on SNP markers of myostatin gene. International J of Poultry Science. Vol. 6, pp: 684-688.
5
Bhattacharya, T.K. and Chatterjee, R.N., 2013. Polymorphism of the myostatin gene and its association with growth traits in chicken. Poultry Science. Vol. 92, pp: 910-915.
6
Dementeva, N.V.; Mitrofanova, O.V.; Tyshchenko, V.I.; Terletskiy, V.P. and Yakovlev, A.F., 2016. The rate of weight gains and productivity of chicken broiler cross with various polymorphic types of myostatin gene. Vavilov Journal of Genetics and Breeding. Vol. 20, No. 1, pp: 39-43.
7
Emara, M.G. and Kim, H., 2003. Genetic markers and their application in poultry breeding. Poultry Science. Vol. 82, pp: 952-957.
8
Ghazikhani Shad, A.; Nejati Javaremi, A. and Mehrabani Yeganeh, H., 2007. Animal model estimation of genetic parameters for most important economic traits in Iranian native fowls. Journal of Biological Sciences. Vol. 10, No. 16, pp: 2787-2789.
9
Havenstein, G.B.; Ferket, P.R. and Qureshi, M.A., 2003. Growth, livability and feed conversion of 1957 versus 2001 broilers when fed representative 1957 and 2001 broiler diets. Poultry Science. Vol. 82, pp: 1500-1508.
10
Jahnson, P.L.; Mcewant, J.C.; Dodds, K.G. and Purchas, R.W., 2005. A directed search in the region of GDF8 for quantitative trait loci affecting carcass trait in Texel sheep. Journal of Animal Science. Vol. 83, pp:1988-2000.
11
Karim, L.; Coppieters, W.; Grobet, L.; Valentini, A. and Georges, M., 2000. Convenient genotyping of six myostatin mutations causing double-muscling in cattle using a multiplex oligonucleotide ligation assay. Anim. Genet. Vol. 31, pp: 396-399.
12
Smet, S.D.; Webb, E.C.; Claeys, E. and Uytterhaegen, L., 2000; Effect of dietary energy and protein levels on fatty acid composition of intramuscular fat in double muscled Belgian Blue bulls. Meat Science. Vol. 56, pp: 73-79.
13
Xianghai, Y.E.; Stewart, R.; Brown, L.; Luiz, L.; Jack, C.M. and Susan, J., 2007. Associations of myostatin gene polymorphisms with performance and mortality traits in broiler chickens. Genet. Sel. Evol. Vol. 39, pp: 73-89.
14
Zhang, G.; Dai, G.; Wang, J.; Wei, y.; Ding, F.; Li, Z.; Zhao, X.; Xie, K. and Wang, w., 2012. Polymorphisms in 5’-upstream regions of the myostatin gene in four chicken breeds and its relationship with growth traits in the Bian chicken. African Journal of Biotechnology. Vol. 11, No. 40, pp: 9677-9682.
15
Zhang, G.; Zhao, X.H.; Wang, J.Y.; Ding,F.X.and Zhang, L.; 2011. Effect of an exon 1 mutation in the myostatin gene on the growth traits of the Bian chicken. Stichting Inter. Foundation for Animal Genetics. Vol. 43, pp: 458-459.
16
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر سطوح مختلف کنگرفرنگی و ویتامین E بر سیستم ایمنی هومورال در جنس نر و ماده بلدرچین ژاپنی
این آزمایش جهت مطالعه سطوح مختلف پودر کنگر فرنگی بر عملکرد سیستم ایمنی هومورال بلدرچین ژاپنی انجام شد. تعداد 240 قطعه بلدرچین یک روزه به طور تصادفی به 4 تیمار با 4 تکرار و هر تکرار شامل 15 قطعه در قالب طرح کاملاً تصادفی با آرایش فاکتوریل 2×4 شامل چهار تیمار تغذیه ای و دو جنس اجرا شد. تیمارهای تغذیه ای شامل گروه شاهد و افزودن دو سطح پودر کنگر فرنگی (1/5 و 3 درصد) و ویتامین E ( سیصد میلی گرم در کیلوگرم) به جیره پایه بودند. به منظور ارزیابی تیتر آنتی بادی علیه گلبول قرمز گوسفندی (SRBC)، در روزهای 35 و 42 دوره پرورش خونگیری انجام شد. در پایان دوره آزمایش از هر واحد آزمایشی جهت مطالعه گلبول های سفید و نیز وزن اندامهای لنفاوی، 4 قطعه بلدرچین (2 نر و 2 ماده) انتخاب و کشتار شدند. نتایج نشان داد که مکمل نمودن جیره پایه با 3 درصد پودر کنگرفرنگی منجر به افزایش معنی دار مقادیر آنتی بادی های IgT و IgM در پاسخ ثانویه (42 روزگی) سیستم ایمنی به SRBC شد (0/05>p). در تیمار 3 درصد پودر کنگرفرنگی تعداد کل گلبول های سفید بیش تر بود (0/05>p). جنس تاثیری بر مقادیر تیتر آنتی بادی علیه گلبول قرمز گوسفندی و نیز تعداد کل گلبول های سفید نداشت. درصد گلبول های هتروفیل و لمفوسیت و نیز نسبت هتروفیل به لمفوسیت تحت تأثیر تیمارهای آزمایشی و جنس قرار نداشتند. وزن نسبی کبد در جنس ماده افزایش معنی داری را نشان داد(0/05>p). نتایج این مطالعه نشان داد که افزودن 3 درصد پودر کنگر فرنگی می تواند در تقویت سیستم ایمنی هومورال در بلدرچین ژاپنی موثر باشد.
http://www.aejournal.ir/article_61865_be783506674f1758a837373a0817ec39.pdf
2017-12-22
113
118
ایمنی هومورال
اندامهای لنفی
بلدرچین ژاپنی
کنگر فرنگی
مرتضی
عالمی
m.a_agri86@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 15739
LEAD_AUTHOR
فیروز
صمدی
samadi542@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 15739
AUTHOR
بهروز
دستار
dastar@gau.ac.ir
3
گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 15739
AUTHOR
سعید
حسنی
hasani@gau.ac.ir
4
گروه علوم دامی، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 15739
AUTHOR
آزادگان، ع.؛ امیری، م.؛ صمدی، ف. و هاشمی، ر.، 1391. بررسی سطوح مختلف گیاه چویر(Ferulago angulata) بر نرخ هتروفیل به لنفوسیت و میانگین تعداد گلبول های سفید خون در بلدرچین ژاپنی. پنجمین کنگره علوم دامی ایران.دانشگاه صنعتی اصفهان. صفحات 69 تا 71.
1
تاج الدینی، م.؛ صمدی، ف.؛ حسنی، س.؛ هاشمی، ر. و قاسم نژاد، ع.، 1390. تأثیر سطوح مختلف کنگر فرنگی و ویتامین E بر سیستم ایمنی جوجه های گوشتی. پایاننامه کارشناسی ارشد. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان.
2
صنوبرکلاتی، ح.؛ شمس شرق، م.؛ دستار، ب. و زره داران، س.، 1389. تأثیر سطوح و منابع مختلف سلنیوم و ویتامین E بر عملکرد، پاسخ ایمنی همورال و کیفیت گوشت در بلدرچین ژاپنی. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان.
3
عفتی، م.؛ صمدی، ف.؛ دستار، ب.؛ هاشمی، ر. و آهنی آذری، م.،1390. تاثیر پودرکنگر فرنگی برسیستم ایمنی جوجه های گوشتی در شرایط تنش گرمایی. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان.
4
نوبخت، ع. و شهریار، ح.، 1389. اثرات مخلوط گیاهان دارویی پنیرک،خارشترونعناع برعملکرد،کیفیت لاشه و متابولیت های خون در جوجه های گوشتی. فصل نامه تخصصی علوم دامی. شماره 3، صفحات 51 تا 63.
5
هاشمی عطار، م.؛ آرشامی، ج.؛ اسماعیل زاده، ح. و مجیدزاده هروی، ر.، 1389. تاثیر سطوح مختلف سیر بر عملکرد و پاسخ ایمنی همورال در جوجه های گوشتی. نشریه پژوهش های علوم دامی ایران. شماره 2، صفحات 43 تا 51.
6
Abdo, M.A.; Radwan, N.L. and Selim, N.A., 2007. The effect of artichoke leaves meal on the utilization of dietary energy for broiler chickens. International Journal of Poultry Science. Vol. 12, pp: 973-982.
7
Adzet, T. and Puigmacia, M., 1985. High-performance liquid chromatography of caffeoylquinic acid derivatives of Cynara scolymus L. leaves. Journal of Chromatography. Vol. 348, pp: 447-452.
8
Akbari, M.R.; Kermanshahi, H.; Nassiri Moghadam, H.; Heravi Moussavi, A.R. and Tavakkoll Afshari, J., 2008. Effect of wheat-soybean meal basal diet supplementation with vitamin A, vitamin E and zinc on blood cells, organ weights and humoral immune response in broiler chickens. J of Animal and Veterinary Advances. Vol. 7, pp: 291-298.
9
Alim, A.; Goze, I.; Goze, H. and Tepe, B., 2009. In vitro antimicrobial and antiviral activities of the essential oil and various extracts of Salvia cedronella Boiss. Journal of Medicinal Plants Research. Vol. 3, pp: 413-419.
10
Al-kassie, G.A.M., 2009. Influence of two plant extracts derived from thyme and cinnamon on broiler performance. Pakistan Veterinary Journal. Vol. 29, pp: 169-173.
11
Banerjee, S., 2010. Carcass studies of Japanese quail (Coturnix Japonica) reared in hot and humid of Eastern India. World Applied Science Journal. Vol. 8, pp: 174-176.
12
Biswas, A.; Mohan, J.; Sastry, K.V.H. and Tyagi, J.S., 2008. Effect of higher levels of dietary vitamin E on performance and immune response in growing Japanese quail. Journal of Applied Animal Research. pp: 7272-7278.
13
Catoni, C.; Schaefer, M. and Peters, A., 2008. Fruit for health: the effect of flavonoids on humoral immune response and food selection in a frugivorous bird. Functional Ecology. Vol. 22, pp: 649-654.
14
Chrousos, G.P., 2000. Stress, chronic inflammation and emotional and physical well-being. Journal of Allergy and Clinical Immunology. Vol. 106, pp: 275-291.
15
Cosentino, S.; Tuberoso, C.I.G.; Pisano, B.; Satta, M.; Mascia, V.; Arzedi, E. and Palmas, F., 1999. In vitro antimicrobial activity and chemical composition of Sardinian Thymus essential oils. Letters in Applied Microbiology. Vol. 29, pp: 130-135.
16
Cook, N.C. and Saman, S., 1996. Flavonoids chemistry, metabolism, cardio protective effects, dietary sources. Journal of Nutritional Biochemistry. Vol. 7, pp: 66-76.
17
Dong, G.C.; Chuang, P.K.; Chang, K.C.; Jan, P.SH.; Hwang, P.; Wu, H.; Myunggi, Y.; Zhou, H.X. and Hueih, M.C., 2009. Blocking effect of an immune-suppressive agent, Cynarin, on CD28 of t-cell receptor. PharmaceuticalResearch. Vol. 26, pp: 375-381.
18
Dong, X.F.; Gao, W.W.; Tong, J.M.; Jia, H.Q.; Sa, R.N. and Zhang, Q., 2007. Effect of polysavone (alfalfa extract) on abdominal fat deposition and immunity in broiler chickens. Poultry Science. Vol. 86, pp: 1955-1959.
19
Elaroussi, M.A.; Fattah, M.A.; Meky, N.H.; Ezzat, I.E. and Wakwak, M.M., 2007. Effects of vitamin E, age and sex on performance of Japanese quail. 1.Haematological indices and liver function. British Poul Scien. Vol. 48, pp: 669-677.
20
Fallah, R.; Kiani, A. and Azarfar, A., 2013. Effect of artichoke leaves meal and mentha extract (Mentha piperita) on immune cells and blood biochemical parameters of broilers. Global Veterinaria. Vol. 10, No. 1, pp: 99-102.
21
Guo, F.C.; Savelkoul, H.F.J.; Kwakkel, R.P.; Williams, B.A. and Verstegen, M.W.A., 2000. Immunoactive, medicinal properties of mushroom and herb polysaccharides and their potential use in chicken diets. Worlds Poultry Science Journal. Vol. 59, pp: 427-440.
22
Haghighi, H.; Jianhua, G.; Carlton, L.; Hayes, A.; Sanei, B.; Parvizi, P.; Gisavi, H.; Chambers, R. and Sharif, S., 2005. Modulation of antibody-mediated immune response by probiotics in chickens. Clinical and Diagnostic Labratory Immunology. Vol. 12, pp: 1387-1392.
23
Jimenez-Escrig, A.; Dragsted, L.O.; Daneshvar, B.; Pulido, R. and Saura-Calixto, F., 2003. In vitro antioxidant activities of edible artichoke (Cynara scolymus L.) and effect on biomarkers of antioxidants in rats. Journal of Agricultural Food Chemistry. Vol. 27, pp: 5540-5545.
24
Jurani, M.; Lamasova, D.; Macajova, M.; Kostal, L.; Joubert, E. and Gerksak, M., 2008. Effect of rooibos tea (Aspalathus linearis) on Japanese quail growth, egg production and plasma metabolites. British Poultry Science. Vol. 49, pp: 55-64.
25
Khaligh, F.; Sadeghi, Gh.; Karimi, A. and Vaziry, A., 2011. Evaluation of different medicinal plants blends in diets for broiler chickens. Journal of Medicinal Plants Research. Vol. 5, pp: 1971-1977.
26
Klasing, K.C., 1998. Nutritional modulation of resistance to infectious diseases. Poultry Science. Vol. 77, pp: 1119-1125.
27
Kul, S.; Seker, I. and Yildirim, O., 2006. Effect of separate and mixed rearing according to sex on fattening performance and carcass characteristics in Japanese quails (Coturnix coturnix Japonica). Archive Tierzucht Dummerstorf. Vol. 49, pp: 607-614.
28
Nelson, N.A.; Lakshmanan, N. and Lanont, S.J., 1995. Sheep red Blood cell and bracella abortus antibody respons in chickens selected for multitrait immunocomopetecne. Poultry Science. Vol. 74, pp: 1603-1609.
29
Nijveldet, R.J.; Van Nood, E.; Van Hoorn, D.E.C.; Boelens, P.G.; Van Norren, K. and Van Leeuwen, P.A., 2001. Flavonoids: a review of probable mech-anisms of action and potential applications. American Journal of Clinical Nutrition. Vol. 74, pp: 418-425.
30
Owen, B. and Mc Cracken, K.J., 2007. A comparison of the effects of different yeast products and antibiotic on broiler performance. British Poultry Science. Vol. 48, pp: 49-54.
31
Rahimi, S.; Teymouri Zadeh, Z.; Karimi Torshizi, M.A.; Omidbaigi, R. and Rokni, H., 2011. Effect of the three herbal extracts on growth performance, immune system, blood factors and intestinal selected bacterial population in broiler chickens. Journal of Agricultural Science and Technology. Vol. 13, pp: 527-539.
32
SAS Institute. 2003. SAS User’s Guide: Statistics. Version 9/1. SAS Institute Inc., Cary, NC.
33
Shimizu, S.; Shiina,T.; Hosomichi, K.; Takahashi.; Koyama, S.T.; Onodera, T.; Kulski, J. and Inoko, H., 2004. MHC class IIB gene sequences and expression in quails (Coturnix japonica) selected for high and low antibody responses. Immunogenetics. Vol. 56, pp: 280-291.
34
Stimpel, H.; Proksch, A.; Wagner, H. and Lohmann Matthes, M.L., 1984. Macrophage activation and induction of macrophage cytotoxicity by purified polysaccharide fractions from plant Echinacea purpurea. Infection and Immunity. Vol. 46, pp: 845-849.
35
Stove, S.D.; Anguelov, G.; Ivanov, I. and Pavlov, D., 2000. Influence of ochratoxin A and an extract of artichoke on the vaccinal immunity and health in broiler chicks. Exprimental and Toxicologic Pathology. Vol. 52, pp: 43-55.
36
Van der Zijpp, A.J. and Leenstra, F.R., 1980. Genetic Analysis of the humoral immune response of white leghorn chicks. Poultry Science. Vol. 59, pp: 1363-1369.
37
Xianfeng, Z.; Hongxun, Z. and Raymond, L., 2004. Phenolic compounds from the leaf extract of artichoke and their antimicrobial activities. Journal of Agricultural and Food Chemistry. 55 p.
38
Yang, L.; Hu, Y.; Xue, J.; Wang, F.; Wang, D.; Kong, X.; Li, P. and Xu, W., 2008. Compound Chinese herbal medicinal ingredients can enhance immune response and efficacy of RHD vaccine in rabbit. Vaccines.Vol. 26, pp: 4451-4455.
39
ORIGINAL_ARTICLE
کالبدشناسی ماکروسکوپیک مفصل قلم پایی - بندانگشتی در شترمرغ
در شترمرغ (Struthio camelus)، تمام نیروی وزن حالت استاده توسط انگشتان اندام حرکتی لگنی تحمل شده به طوری که بیش ترین فشار بر مفصل قلم پایی – بند انگشتی وارد می گردد. در این تحقیق ساختار آناتومیکی این مفصل به طور ماکروسکوپیک مطالعه شد. در این تحقیق 25 قطعه اندام لگنی شترمرغ تهیه شد و پس از فیکس شدن در فرمالین 10% به دقت مورد بررسی و تشریح قرار گرفتند. برای تهیه آرتروگراف، 4 سی سی ماده حاجب هر یک از مفاصل قلم پایی – بند انگشتی مرتبط با انگشت 3 و 4 از سمت میانی به تزریق شد و در حالت گماری DP و LM تصویربرداری پرتونگاری تهیه شد. در بررسی ماکروسکوپیک، فاسیای سطحی دور تا دور مفصل قلم پایی – بند انگشتی و لیگامنت پلانتار را گرفته و با فاسیای تاندون های خم کننده ممزوج می گردد. فاسیای عمقی که شامل دو لایه سطحی و عمقی می باشد به لیگامنت های مفصل قلم پایی – بند انگشتی مرتبط و متصل می باشد. لیگامنت پلانتار باعث حفظ ساختار مفصل قلم پایی – بند انگشتی در سطح کف پایی شده و لیگامنت های متعددی به بالشتک های کف پایی متصل می شوند که سبب حرکت راحت تر انگشتان می گردند. استخوان تارسومتاتارس دوم از 90 روزگی به بعد با استخوان های قلم پای 3 و 4 جوش خورده و به صورت یک زائده باقی می ماند. آرتروگرافی هیچ ارتباط بین مفصل های قلم پایی – بند انگشتی سه و چهار نشان نداد و کاملاً مستقل هستند. هم چنین ته کیسه ها کاملاً قابل تشخیص می باشند.
http://www.aejournal.ir/article_60384_3f80f5b96acdd0abc12fd7bbe7d4ed48.pdf
2017-12-22
119
124
شترمرغ
مفصل قلم پایی- بندانگشتی
آناتومی
پیام
رازقی طهرانی
drpayamrazeghi@gmail.com
1
دانشکده علوم دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم وتحقیقات، تهران، ایران، صندوق پستی: 775-14515
AUTHOR
حسن
گیلانپور
hg.vet.anatomy@gmail.com
2
دانشکده علوم دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم وتحقیقات، تهران، ایران، صندوق پستی: 775-14515
LEAD_AUTHOR
Agabalyan, N.; Evans, D.J.R. and Stanley, R.L., 2013. Investigating tendon mineralisation in the avian hindlimb: a model for tendon ageing, injury and disease. Journal of Anatomy. Vol. 223, pp: 262-277.
1
Belu, C.; Predol, G.; Dumitrescu, I.; Georgescu, B.; Seicaru, A.; Rosu, P.; Bitoiu, C. and Neghirla, I., 2009. Researches Regarding the Shoulder and Elbow Joints in Ostrich (Struthio camelus). Bulletin UASVM Veterinary Medicine. Vol. 66, No. 1, pp: 7-12.
2
Chadwick, K.P.; Regnault, S.; Allen, V. and Hutchinson, J.R., 2014. Three-dimensional anatomy of the ostrich (Struthio camelus) knee joint. PeerJournal. Vol. 2, 706 p.
3
Cooper, R.G., 2008. Walking and behaviors of birds kept in captivity. World poultry. Vol. 24, pp: 24-25.
4
El-Gendy, A.A.; Derbalah, A. and Abu El-Magd,
5
M.E.R., 2012. Macro-microscopic study on the toepad of ostrich (Struthio camelus). Veterinary Research Communication. Vol. 36, pp:129-138.
6
Gangl, D.; Weissengruber, G.E.; Egerbacher, M. and Forstenpointner, G., 2004. Anatomical Description of the Muscles of the Pelvic Limb in the Ostrich (Struthio camelus). Anatomia Histologia Embryologia. Vol. 33, 100-114.
7
Getty, R., 1975. Sisson and Grossmans. the anatomy of the domestic animals. 5th edition. W.B. Saunders Co. Philadelphia. 145-155 p.
8
Nickel, R.; Schummer, A. and Seifrele, E., 1986. The locomotor system of the domestic mammlas. Verlug Paul Parey, Berlin, Hamburg. Vol. 1, pp: 200-213.
9
Smith, N.C.; Wilson, A.M.; Jespers, K.J. and Payne,
10
R.C., 2006. Muscle architecture and functional anatomy of the pelvic limb of the ostrich (Struthio camelus). Journal of Anatomy. Vol. 209, pp: 765-779.
11
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر مرغداری ها و سن گله های مرغ مادر آمیخته تجاری راس بر صفات کیفیت تخم و جوجه درآوری
روش پرورش و سن گله های مرغ مادر از جمله عوامل مهم و موثر بر صفات تخم و جوجه درآوری است. هدف از این تحقیق بررسی تاثیر سن گلههای مرغ مادر و مرغداری های مختلف بر خصوصیات کمی تخمهای تولیدی و جوجه درآوری بود. این آزمایش در قالب طرح بلوک های کامل تصادفی با سه تیمار (سن گله مرغ مادر) و سه بلوک (مرغداری) اجرا شد. از هر مرغداری120تخم مرغ نطفهدار و بارور در سه سن متفاوت (43، 53 و 60 هفته) به طور تصادفی انتخاب شدند. صفات تخم و جوجه درآوری اندازهگیری شدند. برای تجزیه آماری صفاتازرویه GLM در نرم افزارآماری SAS استفاده شد. برای انجام مقایسه میانگیناثر عواملمرغداریوسناز آزمون دانکنبا سطح احتمال 0/05 استفادهشد. اثر مرغداری و سنین مختلف گله های مرغ مادر بر کلیه صفات مورد بررسی معنی دار شد (0/05>P). غیر از ضخامت پوسته و واحد هاو، در اکثر صفاتمورد مطالعه در این تحقیق با افزایش سن،افزایشعملکردمشاهدهشد. باتوجهبهیافته هایاین تحقیق، به طورکلی مرغ های مادر گوشتی بهترین عملکرد را در سنین 53 و 60 هفتگی داشتند.
http://www.aejournal.ir/article_61490_9b5bc6111471f276583f9eb53e031ead.pdf
2017-12-22
125
130
تخم
جوجه درآوری
سن
مرغ مادر
راس
شهاب الدین
قره ویسی
s.gharavysi@googlemail.com
1
گروه علوم دامی، واحد قائم شهر، دانشگاه آزاد اسلامی قائم شهر، ایران
LEAD_AUTHOR
مهرداد
ایرانی
m.irani98@gmail.com
2
گروه علوم دامی، واحد قائم شهر، دانشگاه آزاد اسلامی قائم شهر، ایران
AUTHOR
میلاد
فرهادی
m.farhadi87@gmail.com
3
گروه علوم دامی، واحد قائم شهر، دانشگاه آزاد اسلامی قائم شهر، ایران
AUTHOR
اکبری، ع.؛ شجاعدوست، ب. وکلیدری، غ.، 1375. مدیریت و بهداشت جوجهکشی. واحد آموزش و پژوهش معاونت کشاورزی سازمان اقتصادی کوثر. تهران.
1
Ahn, D.U.; Kim, S.M. and Shu, H., 1997. Effect of egg size and strain and age of hens on the solids content of chicken eggs. Poultry Science. Vol. 76, pp: 914-919.
2
Alkan, S.; Karabag, K.; Galic, A. and Soner Balcioglu, M., 2008. Predicting yolk height, yolk width, albumen length, eggshell weight, egg shape index, eggshell thickness, egg surface area of Japanese quails using various eggs traits as regressors. International Journal of poultry Science. Vol. 7, No. 1, pp: 85-88.
3
Altan, O.; Oguz, I. and Settar, P., 1995. The Effects of Egg Weight and Storage Time on Egg Weight Loss and Hatchability Traits in Japanese quail. Turkish Journal of Agriculture. Vol. 19, pp: 219-222.
4
Bozkurt, M.; Alcicek, A.; Cabuk, M.; Kucukyilmaz, K. and Catli, A.U., 2009. Effect of an herbal essential oil mixture on growth, laying traits, and egg hatching characteristics of broiler breeders. Poultry Science. Vol. 88, pp: 2368-2374.
5
Kingori, A.M., 2011. Review of the factors that influence egg fertility and hatchability in poultry. International Journal of Poultry Science Vol. 10, No. 6, pp: 483- 492.
6
Lapa, C.O.; Gama, L.T. and Chaveiro; M.S., 1999. Effects of Broiler Breeder Age and Length of Egg Storage on Albumen Characteristics and Hatchability. Poultry Science. Vol. 78, pp: 640-645.
7
Nowaczewski, S.; Babuszkiewicz, M. and Kaczmarek,
8
S., 2016. Effect of broiler breeders’ age on eggshell temperature, embryo viability and hatchability parameters. Annals of Animal Science. Vol. 16, No. 1, pp: 235-243.
9
Peebles, E.D.; Doyle, S.M.; Zumwalt, C.D.; Gerard, P.D.; Latour, M.A.; Boyle, C.R. and Smith, T.W., 2001. Breeder age influences embryogenesis in broiler hatching eggs. Poultry Science. Vol. 80, pp: 272-277.
10
Poyraz, O., 1989. Phenotypic correlations between egg characteristics related to egg shell quality. Journal of Lalahan Livestock Research Institute. Vol. 29, pp: 66-79.
11
Reis, L.H.; Gama, L.T. and Chaveiro, M.S., 1997. Effects of Short Storage Conditions and Broiler Breeder Age on Hatchability, Hatching Time, and Chick Weights. Poultry Science. Vol. 76. pp: 1459-1466.
12
Shashidhara, R.G. and Devegowda, G., 2003. Effect of Dietary Mannan Oligosaccharide on Broiler Breeder Production Traits and Immunity. Poultry Science. Vol. 82, pp: 1319-1325.
13
Silversides, F.G. and Scott, T.A., 2001. Effect of storage and layer age on quality of eggs from two lines of hens. Poultry Science. Vol. 80, pp: 1240-1245.
14
Stadelman, W.J., 1986. The preservation of quality in shell eggs. In W. J. stadelman. O. J. Cotteril (Eds.), Egg science and technology. Avi publishing com inc. Westport, Connecticut, U.S.A.
15
Suarez, M.E.; Wilson, H.R.; Mather, F.B.; Wilcox, C.J. and Mcpherson, B.N., 1997. Effect of strain and age of the broiler breeder female on incubation time and chick weight. Poultry Science. Vol. 76, pp: 1029-1036.
16
Yassin, H.; Velthuis, A.G.J.; Boerjan, M.; Van Riel, J. and Huirne, R.B.M., 2008. Field Study on Broiler Eggs Hatchability. Poultry Science. Vol. 87, pp: 2408-2417.
17
ORIGINAL_ARTICLE
اولویت بندی حفاظتی دوزیستان ایران
کاهش جمعیت و خطر پیش رو انقراض دوزیستان نیازمند اقدامی ضروری در جهت حفظ و حمایت از آن ها است. دستیابی به فهرست گونه های با اولویت حفاظت می تواند عامل موثری به منظور تخصیص کارآمد منابع محدود برای حفاظت باشد. در حال حاضر 22 گونه از دوزیستان در ایران زیست می کنند که در مطالعه حاضر، 15 گونه از دوزیستان ایران بر پایه جایگاه حفاظتی گونه ها (IUCN) و تمایز تکاملی (ED) برای انجام اقدام حفاظتی و تدوین برنامه های پایش طولانی مدت، اولویت بندی شدند. نتایج حاصل نشان داد که در میان گونه های مورد بررسی، دوزیستان دم دار (Caudata) براساس جایگاه تکاملی و درجه تهدید، بیش ترین اولویت را برای حفاظت دارا هستند. گونه سمندر غارزی (Paradactylodon gorganensis) و سمندر لرستانی (Neurergus kaiseri) دو گونه با بیش ترین امتیاز هستند و بنابراین به شدت نیازمند اجرای اقدام حفاظتی هستند تا بتوان به بقای درازمدت آن ها امیدوار بود. در نهایت چند راهکار و برنامه پایش از قبیل تکثیر در اسارت، حفاظت از گونه های با اولویت بالای حفاظتی پیشنهاد شده است. هم چنین پیشنهاد می گردد به منظور معرفی مناطق حفاظتی آتی از ترکیب مدل سازی مطلوبیت زیستگاه، اولویت بندی حفاظتی گونه ها و زیستگاه ها براساس روش های فعلی استفاده گردد.
http://www.aejournal.ir/article_61912_5f9bf06916ab59c049d7e3781952193b.pdf
2017-12-22
131
136
دوزیستان
جایگاه حفاظتی
تمایز تکاملی
خطر انقراض
ایران
علیرضا
محمدی
armohammadi1386@ut.ac.ir
1
گروه محیط زیست دانشکده منابع طبیعی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران
AUTHOR
کامران
کمالی
ophiomorus58@gmail.com
2
گروه محیط زیست دانشکده منابع طبیعی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران
AUTHOR
مسعود
نظری زاده
nazari_zadeh@yahoo.com
3
گروه محیط زیست دانشکده منابع طبیعی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران
AUTHOR
سعید
خاکی
saeidkhakic@yahoo.com
4
گروه محیط زیست دانشکده منابع طبیعی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران
AUTHOR
جلیل
ایمانی هرسینی
jalil.imani@ut.ac.ir
5
گروه علوم محیط زیست، دانشکده انرژی محیط زیست، دانشگاه آزاد اسلامی واحدعلوم تحقیقات تهران، ایران
AUTHOR
محمد
کابلی
mkaboli@ut.ac.ir
6
گروه محیط زیست دانشکده منابع طبیعی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران
LEAD_AUTHOR
بلوچ، م. و کمی، ح.ق.، 1385. دوزیستان ایران. چاپ دوم، انتشارات دانشگاه تهران. 177 صفحه.
1
درویش صفت، ع.، 1385. اطلس مناطق حفاظت شده ایران. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. 170 صفحه.
2
رستگارپویانی، ن.؛ جوهری، م. و پارسا ح.، 1385. راهنمای صحرایی خزندگان ایران، جلد اول. انتشارات دانشگاه رازی. 268 صفحه.
3
کرمی، م.؛ قدیریان، ط. و فیض اللهی، ک.، 1395. اطلس پستانداران ایران. جهاد دانشگاهی تهران.
4
فیروز، ا.، 1378. حیات وحش ایران. نشر دانشگاهی. 491 صفحه.
5
فرهادی نیا، م.ص.؛ محمدی، ع.؛ اشرفی، س.؛ اشرف زاده، م و محمدی، ح.، 1394. اولویتبندی حفاظتی پستانداران ایران برای مدیریت کارآمد. مجله محیط زیست طبیعی. دوره 68، شماره 3، صفحات 461 تا 475.
6
کابلی، م.؛ علی آبادیان، م.؛ توحیدی فر، م.؛ هاشمی، ع. و روزلار، ک.، 1395. اطلس پرندگان ایران. 1395. جهاد دانشگاهی تهران. 600 صفحه.
7
کمالی، ک.، 1392. راهنمای میدانی خزندگان و دوزیستان ایران. انتشارات ایران شناسی. 368 صفحه.
8
لطیفی، م.، 1379. مارهای ایران. انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. 478صفحه.
9
مجنونیان، ه.؛ کیابی، ب.؛ و دانش.، م.، 1384. جغرافیای جانوری ایران، جلد دوم.انتشارات موج سبز . 371 صفحه.
10
Baillie, J.E.M.; Hilton-Taylor, C. and Stuart, S.N., 2004. IUCN Red List of Threatened Species. A Global Species Assessment. IUCN Gland, Switzerland and Cambridge, UK.
11
Böhm, M.; Collen, B.; Baillie, J.E.; Bowles, P.; Chanson, J.; Cox, N. and Cheylan, M., 2013. The conservation status of the world’s reptiles. Biological Conservation. Vol. 157,pp: 372-385.
12
Bashari, H. and Hemami, M.R., 2013. A predictive diagnostic model for wild sheep (Ovis orientalis) habitat suitability in Iran. Journal for Nature Conservation. Vol. 21, No. 5, pp: 319-325.
13
Cushman, S.A., 2006. Effects of habitat loss and fragmentation on amphibians: A review and prospectus. Biological conservation. pp: 231-240.
14
Ebrahimi, M.; Kami, H.G. and Stock, M., 2004. First Description of Egg Sacs and Early Larval Development in Hynobiid Salamanders (Urodela, Hynobiidae, Batrachuperus) from North-Eastern Iran. Asiatic Herpetological Research. Vol. 10, pp: 168-175.
15
Isaac, N.J.B.; Turve, Y.S.T.; Collen, B.; Waterman, C. and Baillie, J.E.M., 2007. Mammals on the EDGE: Conservation Priorities Based on Threat and Phylogeny. Plosone2: e296.
16
Issac, N.G.B.; Reeding, D.W.; Meredith, H.M. and Safi,
17
K., 2012. Phylogenetically-Informed Priorities for Amphibian Conservation. Plosone: e43912.
18
IUCN. 2015. The IUCN Red List of Threatened Species. See www.iucnredlist.org. (Accessed14 December 2015).
19
Rastegar-Pouyani, N., 2003. Ecology and conservation of the genus Neurergus in the Zagros Mountains, Western Iran. Frog log. 56 p.
20
Rastegar-Pouyani,N., 2006. Conservation and distribution of Neurergus microspilotus (Caudata: Salamandridae) in the Zagros Mountains, Kermanshah Province, Western Iran. Herpetologia Bonnensis Proceedings of the 13th Congress of the Societies European Herpetologica. M. Vences, J. Köhler, T. Ziegler, and W. Bohme, Eds.
21
Rastegar-Pouyani, N.; Kami, H.G.; Rajabzadeh, M.; Shafeie, S. and Anderson, S.C., 2008. Annotated checklist of amphibians and reptiles of Iran. Iranian Journal of Animal Biosystematics. Vol. 4, No. 1, pp: 7-30.
22
Rondinini, C.; Rodrigues, A.S. and Boitani, L., 2011. The key elements of a comprehensive global mammal conservation strategy. Philosophical Transactions of the Royal Society B: Biological Sciences. Vol. 366, No. 1578, pp: 2591-2597.
23
Rodrigues, A.S. and Brooks, T.M., 2007. Shortcuts for biodiversity conservation planning: the effectiveness of surrogates. Annual Review of Ecology, Evolution and Systematics. pp: 713-737.
24
Richardson, D.M. and Whittaker, R.J., 2010. Conservation biogeography foundations, concepts and challenges. Diversity and Distributions. Vol. 16, No. 3, pp: 313-320.
25
Safi, K.; Armour-Marshall, K.; Baillie, J.E. and Isaac,
26
N.J., 2013. Global patterns of evolutionary distinct and globally endangered amphibians and mammals. PloS one, 8(5), e63582.
27
Sharifi, M. and Assadian, S., 2004. Distribution and conservation status of Neurergus microspilotus (Caudata: Salamandridae) in western Iran. Asiatic Herpetological Review. Vol. 10, pp: 224-229.
28
Sharifi, M.; Papenfuss, T.; RastegarPouyani, N.; Anderson, S. and Kuzmin, S., 2008a. Neurergus kaiseri. In: IUCN 2009. IUCN Red List of Threatened species. Version 2009.1. www.iucnredlist.org. Downloaded on 31 August 2009.
29
Sharifi, M.; RastegarPouyani, N.; Akmali, V. and Narengi, S.A.,2008b. On distribution and conservation status of Neurergus kaiseri (Caudata: Salamandridae). Russian Journal of Herpetology. Vol. 15, pp: 169-172.
30
Sharifi, M.; Shafti, S.; Papenfuss, T.; Anderson, S.; Kuzmin, S. and RastegarPouyani, N., 2008c. Neurergus microspilotus. In: IUCN 2009. IUCN Red List of Threatened Species. Version 2009.1.www.iucnredlist.org. Downloaded on 10 August 2009.
31
Sharifi, M.; Farasat, H.; Barani-Beiranv, H.; Vaissi, S. and Foroozanfar, E., 2013. Notes on the distribution and abundance of the endangered kaisers mountain newt, neurergus kaiserei, in southwestern iran. herpotological conservation and biology. Vol. 8, No. 3, pp: 724-731.
32
AmphibiaWeb. 2017. http://amphibiaweb.org. University of California, Berkeley, CA, USA. Accessed 1 Jan 2017.
33
Di Marco, M.; Cardillo, M.; Possingham, H.P.; Wilson, K.A.; Blomberg, S.P.; Boitani, L. and Rondinini, C., 2012. A novel approach for global mammal extinction risk reduction. Conservation Letters. Vol. 5, No. 2, pp:134-141.
34
Vimal, R.; Rodrigues, A.S.; Mathevet, R. and Thompson, J.D., 2011. The sensitivity of gap analysis to conservation targets. Biodiversity and conservation. Vol. 20, No. 3, pp: 531-543.
35
Pawar, S.; Koo, M.S.; Kelley, C.; Ahmed, M.F.; Chaudhuri, S. and Sarkar, S., 2007. Conservation assessment and prioritization of areas in Northeast India: priorities for amphibians and reptiles. Biological Conservation. Vol. 136, No. 3, pp: 346-361.
36
McCue, A.J.; McGrath, M.J. and Wiersma, Y.F., 2013. Benefits and drawbacks of two modelling approaches for a generalist carnivore: can models predict where Wile E. Coyote will turn up next?
37
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه تولیدمثل قورباغه جنگلی (Rana pseudodalmatina) در استان مازندران (شهرستان بهشهر)
تولیدمثل و ایجاد نسلهای بعد در هر گونه ای یک ویژگی مهم به شمار می آید. مطالعات نشان داده، دوزیستان از جهات مختلفنقش به سزایی بر محیط پیرامون خود داشته و از اهمیت ویژه ای برخوردارند. از این رو تحقیق حاضر، بر روی تولیدمثل قورباغه جنگلی Rana pseudodalmatina از راسته دوزیستان بیدم، خانواده رانیده و بومی ایران در سال های 94-1393صورت گرفته است. منطقه مورد مطالعه در جنوب شهر رستمکلا از توابع شهرستان بهشهر در استان مازندران قرار دارد. ابتدا مطالعات میدانی جهت بررسی تولیدمثل، فصل و محل تخم گذاری و دوره تولیدمثلی در این گونه صورت گرفت. سپس مطالعات آزمایشگاهی جهت بررسی مواردی شامل: وزن برای 13 تودهی تخم، تعداد تخم برای 10 توده، درصد جنین ها و تخم های لقاح نیافته برای 9 توده، میانگین قطر 20 تخم با ژله و بدون ژله برای 5 توده، میانگین طول لاروها در زمان تفریخ برای 2 توده، مدت تبدیل لاروهای تفریخ یافته به بچه قورباغه برای 7 توده و فصل اتمام دگردیسی صورت گرفت. بررسی ها نشان داد، آمپلکسوس زیربغلی بوده و تخم گذاری از اواسط بهمن تا اوایل فروردین و اتمام دگردیسی از اواسط فروردین تا اوایل تیر ماه ادامه دارد. تعداد تخم های توده 1129-539 (میانگین 872/80)، وزن توده 401-103 (میانگین 198/92) گرم، درصد جنین های توده 92/56-19/59 (میانگین 64/4982)، درصد تخم های لقاح نیافته توده 80/41-7/44 (میانگین 34/4332)، قطر تخم با ژله 7/27-5/55 (میانگین 6/6420) میلیمتر، قطر تخم بدون ژله 2/23-1/71 (میانگین 1/9860) میلیمتر، طول لاروها در زمان تفریخ 10/50-9/91 (میانگین 10/2050) میلیمتراست و تبدیل لاروهای تفریخ یافته به بچه قورباغه 113-57 (میانگین 83/43) روز به طولانجامید.
http://www.aejournal.ir/article_61913_3e42287a42bad54f9202344b4675891e.pdf
2017-12-22
137
144
قورباغه جنگلی
Rana pseudodalmatina
تولیدمثل
استان مازندران
نسیم
صباغی رستمی
nasim.sabaqi@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، کد پستی: 155
AUTHOR
حاجی قلی
کمی
hgkami2000@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، کد پستی: 155
LEAD_AUTHOR
نجمه
اخلی
najmeokhli@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، کد پستی: 155
AUTHOR
باباکردی، ف.، 1385. بررسی تخم و لارو قورباغه جنگلی Rana macrocnemis pseudodalmatina تا مرحله دگردیسی در استان گلستان. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده علوم پایه، دانشگاه شهید بهشتی. 200 صفحه.
1
باباکردی، ف.؛ پاشایی راد، ش. و کمی، ح.، 1385. بررسی تخم و لارو قورباغه جنگلی (Rana macrocnemis pseudodalmatina) در استان گلستان. چهاردهمین کنفرانس سراسری و دومین کنفرانس بین المللی زیست شناسی ایران، دانشگاه تربیت مدرس. تهران. صفحات 249 تا 250.
2
بلوچ، م. و کمی، ح.، 1385. دوزیستان ایران. انتشارات دانشگاه تهران. تهران. چاپ دوم. 177 صفحه.
3
پسرکلو، ع.، 1388. مطالعۀ زیست شناسی تولیدمثل در قورباغۀ جنگلی (Rana macrocnemis pseudodalmatina)در استان گلستان (مینودشت). پایان نامۀ کارشناسی ارشد. دانشگاه لرستان. دانشکده علوم. 126 صفحه.
4
پسرکلو، ع.؛ قارزی، ا.؛ کمی، ح. و نجیب زاده، م.، 1391. مطالعه زیست شناسی تولیدمثل در قورباغه جنگلی (Rana macrocnemis pseudodalmatina)در استان گلستان (مینودشت). مجله زیست شناسی ایران. جلد 25، شماره 1، صفحات 55 تا 63..
5
پسرکلو، ع.؛ قارزی، ا. و کمی، ح.، 1387. مطالعه و بررسی مراحل جنینی و دگردیسی در قورباغۀ جنگلی (Rana macrocnemis pseudodalmatina) در استان گلستان ( مینودشت). مجله دانشگاه اصفهان (علوم پایه). جلد 35، شماره 6، صفحات 209 تا 222.
6
کمی، ح.، 1370. بیوسیستماتیک دوزیستان ترکمن صحرا و دشت گرگان و مروری بر دوزیستان ایران. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده علوم، دانشگاه تهران. 210 صفحه.
7
مومنی، م. و زحمتکش، ی.، 1383. بررسی امکان تکثیر و پرورش گونه Rana ridibundaدر تالاب انزلی. اولین کنگره علوم دام و آبزیان کشور. دانشگاه تهران. صفحات 1075 تا 1078.
8
میرزاجانی، ع.؛ کیابی، ب. و باقری، س.، 1385. بررسی رشد لارو قورباغه مردابی و برآورد جمعیت گونه Rana ridibundaدر تالاب انزلی. مجله زیست شناسی ایران. جلد 19، شماره 2، صفحات 191 تا 202.
9
Andrew, R.; Blaustein, S.C.; Walls, B.A.; Bancroft, J.J.; Lawler, C.L.S. and Stephanie, S.G., 2010. Direct and Indirect Effects of Climate Change on Amphibian Populations. Diversity. Vol. 2, No.2, pp: 281-313.
10
Benitez-Mandujano, M.B. and Flores-Nava, A., 1997. Growth and metamorphosis of Rana catesbeiana (show) tadpoles fed live and supplementary feed, using tilapia, Oreochromis niloticus (L), as a biofertilizer. Aquatic research. Vol. 28, pp: 481-488.
11
Chen, L.C., 1990. Aquaculture in Taiwan, Fishing news books publication. 237 p.
12
Duellman, W.E. and Trueb, L., 1986. Biology of amphibians. New York. 670 p.
13
Duellman, W.E., 2002. An overview of phylogeny, classification and reproductive modes, in: jamieson, B.J.M. Reproductive biology and phylogeny of Anura. Vol. 2, pp: 1-18.
14
Flores-Nava, A. and Munoz, V., 1999. Growth, metamorphosis and feeding behavior of Rana catesbeiana show 1802 tadpoles at different rearing densities. Aquatic research. Vol. 30, pp: 1-7.
15
Hayes, T.B., 1997. Hormonal mechanisms as potential constraints on evolution: Examples from the Anura. Amer. Zool. Vol. 37, pp: 482-490.
16
Macleod, H., 2006. Amphibians in the great lakes region.
17
Gilbert, S.F., 2000. Developmental biology. 6th edition. Sinauer 87.
18
Rastegar-Pouyani, N.; Kami, H.G.; Rajabzadeh, M.; Shafiei, S. and Anderson, S.C., 2008. Annotated Checklist of Amphibians and Reptiles of Iran. (IJAB). Vol. 4, No. 1, pp: 7-30.
19
Safaei-Mahroo, B.; Ghaffari, H.; Fahimi, H.; Broomand, S.; Yazdanian, M.; Najafi Majd, E.; Hosseinian Yousefkhani, S.S.; Rezazadeh, E.; Hosseinzadeh, M.S.; Nasrabadi, R.; Rajabizadeh, M.; Mashayekhi, M.; Motesharei, A. and Kazemi, S.M., 2015. The Herpetofaunaof Iran: Checklist of Taxonomy, Distribution and Conservation Status. (AHR). Vol. 6, No. 4, pp: 257-290.
20
Google.Earth.com
21
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی ویژگی های ریخت شناسی سمندر لرستانی (Neurergus Kaiseri) در غرب و جنوب غرب ایران
سمندر لرستانی (Neurergus Kaiseri) از دوزیستان دم دار بومی ایران است که جمعیت های آن در غربو جنوب غرب ایران و در بخش هایی از استان های لرستان و خوزستان پراکنده شده است. در این مطالعه به منظور مطالعه ویژگیهای ریخت شناسی این گونه، 85 فرد از 8 سایت در جنوب لرستان و شمال استان خوزستان در طی سال های 1395-1394 نمونه برداری شدند. برای هرفرد چهار ویژگی اصلی شامل طول دم (TL)، طول سر (HL)، طول بدن (SVL) و طول کل بدن (BL) و چهار نسبت شامل طول کل بدن به طول سر(BL- HL)، طول کل بدن به طول دم (BL- TL)، طول کل بدن به طول بدن (BL- SVL) و طول دم به طول بدن (TL- SVL) اندازهگیری شد و این صفات در بین جمعیت های مورد مطالعه مقایسه شد. متوسط طول بدن ماده ها در تبار شمالی 13/33 (13/72-12/95) سانتی متر و در تبار جنوبی 12/78 (13/09- 12/54) سانتی متر و هم چنین برای نرها نیز در تبار شمالی 11/81 (12/212-11/490) سانتی متر و تبار جنوبی 12/112 (12/365-11/804) سانتی متر به دست آمد. تحلیل آزمون ANOVA انجام شده نشان دهنده تمایز معنی دار میان صفات ریختی جمعیت ها بود به طوری که جمعیت های دو تبار شمالی و جنوبی به جز در مشخصه طول کل بدن، از نظر سایر صفات ریختی و نسبتی دارای اختلاف معنی داری (0/05>P) بودند.
http://www.aejournal.ir/article_62651_743a66ad6319e32da66b87baf53a16d1.pdf
2017-12-22
145
150
سمندر لرستانی
Neurergus kaiseri
ریخت شناسی
سازگاری ریختی
هادی
خوشنام وند
khv@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، کدپستی: 8415683111
AUTHOR
منصوره
ملکیان
mmalekian@cc.iut.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، کدپستی: 8415683111
LEAD_AUTHOR
یزدان
کیوانی
keivany@iut.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، کدپستی: 8415683111
AUTHOR
محسن
امیری
a.soalim@yahoo.com
4
واحد همدان، دانشگاه آزاد اسلامی همدان، ایران
AUTHOR
فروغ
گودرزی
fogty@yaho.com
5
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، کدپستی: 8415683111
AUTHOR
جولاده رودبار، آ. ووطن دوست، ص.، 1394. بررسی مقایسه ای صفت های ریخت سنجی و شمارشی ماهی Barilus mesopotamicusدر رودخانه های سیمره، چنگوله و سیاه گاو استان ایلام. مجله بهره برداری و پرورش آبزیان. جلد4، شماره1، صفحات 47 تا 63.
1
رادخواه، ع.؛ پورباقر، ه. و ایگدری، س.، 1394. بررسی عوامل اکولوژیکی مؤثر بر ویژگی های ریخت سنجی ماهی شاهکولی (1925 Alburnus atropatenae Berg,) در رودخانه های سیمینه رود و زرینه رود. مجله بوم شناسی آبزیان. سال 5، شماره 3، صفحات 12 تا 20.
2
یوسفی،م.؛ کابلی، م.؛ایگدری، س.؛ محمدی، ع.و رضایی، ع.، 1394. بررسی تغییرات مورفومتریک کمرکولی بزرگSitta tephronota dresseri در امتداد رشته کوه زاگرس. مجله تاکسونومی و بیوسیستماتیک. سال7، شماره22، صفحات 23 تا 34.
3
محمدیان، ح.، 1382. خزندگان و دوزیستان ایران. انتشارات سبپره.226 صفحه.
4
هزاوه، ن.؛ قاسمزاده، ف.ودرویش، ج.، 1386. بررسی بیوسیستماتیک (مورفولوژی، کاریولوژی و مورفومتری) دوزیستان بی دم (Anura) استان مرکزی. مجله زیست شناسی ایران. جلد20، شماره 4، صفحات 458 تا 467.
5
Baran,, I. and Atatür, M.K., 1998. Turkish Herpetofauna (Amphibians and Reptiles). Republic of Turkish Ministry of Environment, Ankara, Turkey.
6
Chang, Y.; Wang, H. and Hou, W., 2011. Effects of Construction Materials and Design of Lake and Stream Banks on Climbing Ability of Frogs and Salamanders. Ecological Engineering. Vol. 37, pp: 1726-1733.
7
Cicek, K.; Ayaz, D. and Serdar, H., 2010. Data on Morphology of Southern Crested Newt, Triturus karelinii (Strauch, 1870) (Caudata: Salamandridae) in Uludağ (Bursa, Turkey). Biharean Biologist. Vol. 4, No. 2, pp: 103-107.
8
Cicek, K.; Ayaz, D. and Bayrakci, Y., 2011. Morphology of the Northern Banded Newt, Ommatotriton ophryticus (Berthold, 1846) (Caudata: Salamandridae) in Uludağ (Bursa, Turkey). Herpetology Notes. Vol. 4, pp: 161-165.
9
Cornuau, J.; Schmeller, D.; Pigeault, R.; Sibeaux, A.; Tourat, A. and Loyau, A., 2014. Information-content of Morphological and Behavioural Sexual Traits in the Palmate Newt (Lissotriton helveticus). Behavioural Processes. Vol. 108, pp: 36-42.
10
Farasat, H. and Sharifi, M., 2015. Ageing and Growth of the Endangered Kaiser’s Mountain Newt, Neurergus kaiseri (Caudata: Salamandridae), in the Southern Zagros Range Iran. Journal of Herpetology. Vol. 50, No. 1, pp: 120-125.
11
Farasat, H.; Akmali, V. and Sharifi, M., 2016. Population Genetic Structure of the Endangered Kaiser’s Mountain Newt, Neurergus kaiseri (Amphibia: Salamandridae). Plos One Vol. 11. No. 2. e0149596.
12
IUCN. 2016. Neurergus kaiseri, The red list of threatened species, Http://www.IUCNredlist.org/details/59450/0. Version 4/2015. (Last accessed on 07 April 2016).
13
Krizmanic, G.; Mesaros, G.; Dzuki, M. and Kalezic, L., 1997. Morphology of the Smooth Newt (Triturus Vulgaris) in Former Yugoslavia, Taxonomical Implications and Distribution Patterns. Acta Zoologica Academiae Scientiarum Hungaricae. Vol. 43, No. 4, pp: 345-357.
14
Sharifi, M.; Farasat, H. and Vaissi, S., 2012. Sexual size dimorphism in Neurergus kaiseri (Caudata: Salamandridae) in south-western Zagros Mountains, Iran. Amphibian and Reptile Conservation. Vol. 6, No. 4, pp: 1-8.
15
Sharifi, M.; Farasat, H.; BaraNi-Beiran, H.; vaissi, S. and Foroozanfar, E., 2013. Notes on the Distribution and Abundance of the Endangered Kaiser’s Mountain Newt, Neurergus kaiseri (caudata: salamandridae), in southwestern Iran. Herpetological Conservation and Biology. Vol. 8,No. 3, pp: 724-731.
16
Smith, G.; Hopkins, G.; Mohammadi, Sh.; Skinner, H.; Hansen, T.; Brodie, E. and French, Jr., 2015. Effects of Temperature on Embryonic and Early Larval Growth and Development in the Rough-Skinned Newt (Taricha granulosa). Journal of Thermal Biology. Vol. 51, pp: 89-95.
17
Walls, S.C.; Belanger, S.S. and Blaustein, A.R., 1993. Morphological Variation in a Larval Salamander: Dietary Induction of Plasticity in Head Shape. Oecologia. Springer Verlog. Vol. 96, pp: 162-168.
18
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی عادات غذایی سه گونه گاوماهی از جنس Neogobius در بخش جنوب مرکزی دریای خزر، نوشهر
خانواده گاوماهیان (Gobiidae)، از فراوانترین ماهیان موجود در دریای خزر میباشند. این ماهیان از مصرفکنندگان عظیم منابع غذایی و رقیب جدی برای سایر گونهها هستند. مطالعه حاضر بر روی رژیم غذایی سه گونه گاوماهی شنی خزری (Neogobius pallasi)، گرد (Neogobius melanostomus) و خزری (Neogobius caspius) از فروردین 1391 تا مهر 1392 در 14 ایستگاه در ساحل نوشهر انجام گرفت. در کل 400 عدد گاوماهی شنی خزری، 191 عدد گرد و 161 عدد خزری بررسی شد. در نتیجه بررسی رژیم غذایی ، گروههای متنوعی شامل خرچنگ، میگو، دوکفهای، کشتیچسب، کرم پرتار، گاماروس، صدفیان، روزنه دار، بقایای ماهی و تخم ماهی شناسایی شد. طی دوره مطالعه، گاوماهی شنی خزری و گرد فاقد غذای اصلی بودند ولی گاوماهی خزری از گاماروس به عنوان غذای اصلی استفاده کرد. بیش ترین فراوانی نسبی طعمهها را دوکفهایها با 28/68 درصد در گاوماهی شنی خزری، کشتیچسب، صدفیان وکرم پرتار به ترتیب با 23/31، 21/83 و 20/03 درصد در گاوماهی گرد و گاماروس با 59/78 درصد در گاوماهی خزری به خود داشتند. شاخص تهی بودن معده در هر سه گونه در بهار بالا بوده در تابستان کاهش و سپس در پاییز افزایش یافت. استراتژی تغذیهای گاوماهی شنی خزری و گرد به سمت تخصصی بودن پیش رفت ولی در گاوماهی خزری به صورت مخلوط بود و گاماروس طعمه پراهمیت بود. میانگین شاخص شانون بین دوگونه گاوماهی شنی خزری (0/24±1/4) و خزری (0/35±0/78) و هم چنین گرد (0/43±1/32) و خزری اختلاف معنی دار داشت.
http://www.aejournal.ir/article_63042_c50ebf1d4a9fe780e202c7f7613984e0.pdf
2017-12-22
151
160
گاوماهیان
رژیم غذایی
ارجحیت غذایی
ساحل نوشهر
دریای خزر
زینب
سعیدی
zeinab.saeedi111@gmail.com
1
گروه زیست شناسی و زیست فناوری دریا و آبزیان، دانشکده علوم و فناوری های زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران، صندوق پستی: 1983969411
LEAD_AUTHOR
اصغر
عبدلی
asabdoli@yahoo.com
2
پژوهشکده علوم محیطی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، صندوق پستی: 19834
AUTHOR
بهرام
حسن زاده کیابی
b.h.kiabi@gmail.com
3
گروه زیست شناسی و زیست فناوری دریا و آبزیان، دانشکده علوم و فناوری های زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران، صندوق پستی: 1983969411
AUTHOR
صهبا
بهمن پور
sahbastar_1988@yahoo.com
4
گروه زیست شناسی و زیست فناوری دریا و آبزیان، دانشکده علوم و فناوری های زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران، صندوق پستی: 1983969411
AUTHOR
مهناز
حامدیان
hamediankishmahnaz@yahoo.com
5
گروه زیست شناسی و زیست فناوری دریا و آبزیان، دانشکده علوم و فناوری های زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران، صندوق پستی: 1983969411
AUTHOR
بیسواس، اس.پی.، 1993. روشهای دستی در بیولوژی ماهی. ترجمه ولیپور. ع و عبدالملکی. ش.، 1379. نشر مرکز تحقیقات شیلاتی استان گیلان. 138 صفحه.
1
بیرشتین. آی. ای.، 1968. اطلس بیمهرگان دریای خزر. ترجمه دلی ناد. ل و نظری. ف.، 1379 موسسه تحقیقات شیلات ایران، مدیریت اطلاعات علمی و روابط بین الملل. تهران. 610 صفحه.
2
پیری، ح.، 1379. بررسی سیستماتیک، پراکنش و برخی از خصوصیات زیستی گاوماهیان(Gobiidae) سواحل جنوبی دریای خزر (آب های استان گیلان). پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات. دانشکده علوم و فنون دانشگاه آزاد اسلامی، تهران شمال. 195 صفحه.
3
رحمانی، ح.، 1377. بررسی برخی از خصوصیات بیولوژیکی و اکولوژیکی ماهیانNeogobius melanostomus و Neogobius fluviatilis در نهر مادرسوپارک ملی گلستان. پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 134 صفحه.
4
عباسی،ک.؛سرپناه، ع.؛ صیادرحیم، م.، نوروزی، ه.؛ سبکآرا، ج.؛ ماهی صفت، ف.؛ عبدالهپور، ح.؛ جمالزاده، ف.، 1390. بررسی عادت تغذیهای گاوماهی خزری (Neogobius cspius) در سواحل استان گیلان (جنوب غربی دریای خزر). زیست شناسی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. شماره 11، صفحات 1 تا 12.
5
عبدالهپور،ح.؛ عباسی،ک. و سرپناه،ع.، 1389 .بررسی تغذیه گاوماهی گرد (Neogobius melanostomus) در سواحل جنوب غربی دریای خزر) سواحل استان گیلان (، مجله شیلات. سال 4، شماره 3، صفحات 15 تا 26.
6
علوی یگانه، م.ص. و کلباسی، م.ر.، 1385. بررسی رژیم غذایی گاوماهی شنی خزریNeogobius fluviatilis pallasi (Berg,1916) در جنوب دریای خزر (ساحل نور). مجله زیست شناسی ایران. نسخه 19، شماره 2، صفحات 180 تا 190.
7
قلیچی، ا.، 1377. بررسی سن، رشد، تغذیه و تولید مثل گاوماهیان در سواحل شرقی دریای خزر، خلیج میانکاله. پایاننامه کارشناسی ارشد. دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه گرگان. 63 صفحه.
8
کیمرام، ف.، 1373. شناسایی و بررسی بیولوژیک گاوماهیان Gobiidae خلیج گرگان، پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی تهران واحد شمال. 77 صفحه.
9
ووتن، ر.، 1992. بومشناسی ماهیان. ترجمه استکی، ع.، 1383. انتشارات موسسه تحقیقات شیلات ایران. 244 صفحه.
10
Abdoli, A.; Allahyari, S.; Kiabi, B.H.; Patimar, R.; Ghelichi, A.; Mostafavi, H.; Aghili, S.M. and Rasooli, P., 2009. Length weight relationships for seven Gobiid fish species in the southeastern Caspian Sea basin, Iran. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 25, pp: 786-785.
11
Abdoli, A.; Allahyari, S.; Patimar, R. and Kiabi, B.H., 2012. Feeding strategies of three Neogobius species in the Gomishan Wetland of Iran, South-east Caspian Sea. Journal of Zoology in the Middle East. Vol. 65, pp: 49-54.
12
Amundsen, P.A.; Gabler, H.M. and Staldvik, F.J., 1996. A new approach to graphical analysisof feeding strategy from stomach contents data modification of the Costello (1990) method. Journal of Fish Biology. Vol. 48, pp: 607-614.
13
Azizova, N.A., 1962. The possibility of a goby fishery in the Caspian-Ryb. Khoz. 3:14 (in Russian).
14
Berg, L.S., 1949. Presnovodnye ryby Irana i sopredel'nykh stran. Freshwater fishes of Iran and adjacent countries. Trudy Zoologicheskogo Instituta Akademii Nauk. pp: 783-585.
15
Biswass, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology. South Asia Publishers PVT., New Dehli International Book Co. Absecon Highlands. N.J. pp: 65-77.
16
Borza, P.; Erős, T. and Oertel, N., 2009. Food resource partitioning between two invasive gobiid species (Pisces, Gobiidae) in the Littoral Zone of the River Danube, Hungary. Int. Rev.Hydrobiol. Vol. 94, pp: 609-621.
17
Brandner, J.; Auerswald, K.; Cerwenka, A.F.; Schliewen, U.K. and Geist, J., 2013. Comparative feeding ecology of invasive Ponto Caspian gobies. Hydrobiologia. Vol. 703, pp: 113-131.
18
Coad, B.W., 2003. The fresh water fishes of Iran, Family: Gobiidae. Available on www.briancoad.com.
19
Coad, B.W., 2013. Freshwater fishes of iran. Electronic version, updated 06 May 2013. www.briancoad .com.
20
Corkum, L.D.; Sapota, M.R. and Skora, K.E., 2004. The round goby, Neogobius melanostomus, a fish nvader on both sides of the Atlantic Ocean. Biological invasions. Vol. 6, pp: 173-181.
21
Costello, M.J., 1990. Predator feeding strategy and prey importance: a new graphical analysis. Journal of Fish Biology. Vol. 36, pp: 261-263.
22
Eschmeyer, W., 2013. Catalog of fishes. Electronic version, updated 04 January 2013.
23
Euzen, O., 1987. Food habits and diet composition of some fish of Kuwait. Kuwait Bulletin of Science. Vol. 9, pp: 65-85.
24
Ghedotti, M.J.; Simhula, J.C. and Smith, G.R., 1995. Zebra mussel predation by round gobies in the laboratory. J. Great Lakes Res. Vol. 21, pp: 665-669.
25
Hajisamaea, S.; Choua. L.M. and Ibrahim, S., 2003. Feeding habits and trophic organization of the fish community in shallow waters of an impacted tropical habitat Estuarine. Coastal and Shelf Science. Vol. 58, pp: 89-98.
26
Holden, M.J. and Raitt, D.F.S., 1974. Methods of Resource Investigation and Their Application. Manual of Fisheries Science. FAO, Rome.
27
Hixon, M., 1980. Competitive interactions between California reef fishes of the genus Embiotoca. Ecology. Vol. 61, pp: 918-931.
28
Jansen, P.A.; Slettvold, H.; Finstad, A.G. and Langeland, A., 2002. Niche segregation between Arctic char (Salvelinus alpinus) and brown trout (Salmo trutta), an experimental study of mechanisms. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 59, pp: 6-11.
29
Jurajda, P.: Cerny, J.; Polacik, M.; Valová, Z.; Janác, M.; Blažek, R. and Ondracková, M., 2005. The recent distribution and abundance of non-native Neogobius fishes in the Slovak section of the river Danube. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 21, pp: 319-323.
30
Krebs, C.J., 1999. Ecological Methodology,Benjamin Cummings. Menlo Park CA. 620 p.
31
Miller, P.J., 1986. Gobiidae. In: Fishes of the Northeast Atlantic and Mediterranean (Whitehead P.J.P., Bauchot M.-L., Hureau J.-C., Nielsen J. & Tortonese E., eds), Paris: UNESCO. pp: 1019-1086.
32
Miller, P.J., 2003. The freshwater fishes of Europe. Mugilidae, Atherinidae, Atherinopsidae, Blenniidae, Odontobutidae, Gobiidae. Vol. 8/I, 404 p.
33
Moyle, P.B.C. and Cech, J.J., 2004. Fishes: an introduction to ichthyology. Upper Saddle River, NJ: Pearson Prentice Hall.
34
Pinchuk, V.I.; Vasil’eva, E.D.; Vasil’ev, V.P. and Miller, P.J., 2003. Neogobius melanostomus (Pallas, 1814). In Miller, P. J. (ed.), The Freshwater Fishes of Europe. Vol. 8.
35
Ragimov, D.B., 1976. Materials on distribution and abundance of gobies at the east coasts of the Middle and South Caspian. Izv.Akad. Nauk. Azarb. SSR. (Boil.). Vol. 2, pp: 83-87 (in Russian).
36
Rahimov, D.B., 1991. The Caspian Sea Gobiidae. Senpeterzburgh, Russia. 602 p.
37
Ross, S.T., 1986. Resource Partitioning in Fish Assemblages, A Review of Field Studies. Copeia. Vol. 2, pp: 352-388.
38
Sarpanah, A.S.; Ghasemzadeh, G.R.; Nezami, S.A.; Shabani, A.; Christianus, A.; Shabanpour, B. and Chiroos, B.S., 2010. Feeding characteristics of Neogobis caspius in the south west coastline of the Caspian Sea (Gilan Province).Iranian journal of fisheries science. Vol. 9, pp: 127-140.
39
Segurado, P.; Santos, J.M.; Pont, D.; Melcher, A.H.; Jalon, D.G.; Hughes, R.M. and Ferreira, M.T., 2011. Estimating species tolerance to human perturbation, Expert judgment versus empirical approaches. Ecol Ind Vol. 11, pp: 1623-1635.
40
Skora, K., 2001. Observations on Diet Composition of Neogobius melanostomus Pallas 1811 in the Gulf of Gdansk (Baltic Sea). J. Great Lakes Res. Vol. 27, pp: 209-299.
41
Stepanova, T., 2001. Specific Features of Reproduction and Growth of Gobies in the Northern Caspian Sea. Collection of Scientific Papers of the Caspian Research Institute of Fishery Management on Ecology of Juveniles and Problems of Reproduction of Caspian Fish. pp: 268-276.
42
Števove, B. and Kováč, V., 2013. Does invasive bighead goby Neogobius kessleri and round goby N. melanostomus (Teleostei, Gobiidae) compete for food? Knowledge and Management of Aquatic Ecosystems. 8 p.
43
Svetovidov, A.N., 1964. Fishes of the Black Sea. Nauka, Moskow. 552 p (in Russian).
44
Werner, E.E. and Hall, D.J., 1977. Competition and habitat shift in two sunfishes (Centrarchidae). Ecology. Vol. 58, pp: 869-876.
45
Winemiller, K.O. and Pianka, E.R., 1990. Organization in natural assemblages of desert lizards and tropical fishes. Ecol Mono. Vol. 60, pp: 27-55.
46
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی وضعیت دوریختی جنسی در گاوماهی چشمنواری (1822 Glossogobius giuris (Hamilton, در حوضه مکران، سیستان و بلوچستان
بهمنظور مطالعه دوریختی جنسی گاوماهی چشمنواری (Glossogobius giuris)، تعداد 60 قطعه ماهی (شامل 30 قطعه از هر جنس) با استفاده از دستگاه الکتروشوکر طی تابستان 1392 از رودخانه باهوکلات، پایینتر از سد پیشین در استان سیستان و بلوچستان صید و به آزمایشگاه ماهیشناسی دانشگاه تهران منتقل گردید. برای این منظور تعداد 22 صفت اندازشی و پنج صفت شمارشی موردبررسی قرار گرفت. نتایج آمارههای توصیفی دادهها نشان داد تنوع ریختی بین نمونهها (بهویژه تعداد شعاع غیرمنشعب باله پشتی اول، تعداد شعاعهای منشعب باله پشتی دوم و تعداد شعاعهای منشعب باله مخرجی) بیش از مقادیر گزارش شده در مطالعات پیشین است که این امر را میتوان بهعنوان تنوع ریختی به این گونه نسبت داد. نتایج تجزیهوتحلیل آماری براساس آنالیز تشخیصی (DFA) و آزمون جایگشت (Permutation test) برای صفات اندازهای و تجزیه و تحلیل تطابقی CA) Correspondence Analysis ) برای صفات شمارشی نشان داد که بین دو جنس نر و ماده هم پوشانی بالایی وجود داشته و براساس صفات استفاده شده در این مطالعه نمیتوان جنسهای نر و ماده را از هم تشخیص داد.
http://www.aejournal.ir/article_63043_1eb83909359e5f0d0f905f31f0157ab6.pdf
2017-12-22
161
166
ریختسنجی
سازشپذیری ریختی
گاوماهیان
ماهیان ایران
ماهیشناسی
منوچهر
نصری
nasri.m@lu.ac.ir
1
دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه لرستان، خرمآباد، لرستان، ایران
AUTHOR
سهیل
ایگدری
soheil.eagderi@ut.ac.ir
2
گروه شیلات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی کرج، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
سحر
قرهحسنلو
3
گروه کشاورزی، دانشگاه پیام نور، کرج، ایران
AUTHOR
Abdoli, A., 2000. The inland water fishes of Iran, Naghsh Mana Publication, Tehran. (Farsi).
1
Abramoff, M.D.; Magalhaes, P.J. and Ram, S.J., 2004. Image Processing with ImageJ. Biophotonics International. Vol. 11, No. 7, pp: 36-42.
2
Akbarzadeh, A.; Karami, M.; Nezami, S.-A.; Amiri, B.M.; Khara, H. and Eagderi, S., 2009. A comparative study of morphometric and meristic characters of pikeperch Sander lucioperca (L.) in Iranian waters of Caspian Sea and Aras Dam Lake. Iranian journal of biology. Vol. 2, No. 3, pp: 535-545. (Farsi).
3
Baumgartner, J.V.; Bell, M.A. and Weinberg, P.H., 1988. Body form differences between the Enos Lake species pair of threespine sticklebacks (Gasterosteus aculeatus complex). Canadian Journal of Zoology. Vol. 66, No. 2, pp: 467-474.
4
Bird,N.C. and Hernandez, L.P., 2009. Building an evolutionary innovation: Differential growth in the modified vertebral elements of the zebrafish Weberian apparatus. Zoology. Vol. 112, No. 2, pp: 97-112.
5
Chan, M.D., 2001. Fish ecomorphology: predicting habitat preferences of stream fishes from their body shape. PhD, fisheries and wildlife sciences, Virginia Polytechnic Institute and State University. 269 p.
6
Coad, B.W., 2016. Freshwater fishes of Iran. Updated 13 May 2016. [Cited 13 May 2016]. Aavailable from: www.briancoad.com.
7
Costa, C. and Cataudella, S., 2007. Relationship between shape and trophic ecology of selected species of Sparids of the Caprolace coastal lagoon (Central Tyrrhenian sea). Environmental Biology of Fishes. Vol. 78, pp: 115-123.
8
Costa, C.; Vandeputte, M.; Antonucci, F.; Boglione, C.; Menesatti, P.; Cenadelli, S.; Parati, K.; Chavanne, H. and Chatain, B., 2010. Genetic and environmental influences on shape variation in the European sea bass (Dicentrarchus labrax). Biological Journal of the Linnean Society. Vol, 101, pp: 427-436.
9
Doha, S., 1974. Investigation into the biology of the gobi, Glossogobius giuris (Hamilton-Buchanan). Bangladesh Journal of Zoology. Vol. 2, pp: 95-106.
10
Dorado, E.L.; Torres, M.A.J. and Demayo, C.G., 2012. Describing body shapes of the white goby, Glossogobius giuris of Lake Buluan in Mindanao, Philippines using landmark-based geometric morphometric analysis. International Research Journal of Biological Sciences. Vol. 1, No. 7, pp: 33-37.
11
Elliott, N.G.; Haskard, K. and Koslow, J.A., 1995. Morphometric analysis of orange roughy (Hoplostethus atianticus) off the continental slope of southern Australia. Journal of Fish Biology. Vol. 46, No. 2, pp: 202-220.
12
Eschmeyer, W.N. and Fong, J.D., 2011. Animal biodiversity: An outline of higher-level classification and survey of taxonomic richness. Zootaxa. Vol. 3148, pp: 26-38.
13
Esmaeili, H.R.; Baghbani, S.; Zareian, H. and Shahryari, F., 2009. Scale morphology of tank goby Glossogobius giuris (Hamilton-Buchanan, 1822) (Perciformes: Gobiidae) using scanning electron microscope. Journal of Biological Sciences. Vol. 9, No. 8, pp: 899-903.
14
Froese, R. and Pauly, D., 2016. FishBase. Updated 01. [Cited 01]. Aavailable from: www.fishbase.org.
15
Gholizade, M.; Ghorbani, R.; Mahini,A.R.S.; Hajimoradloo, A.M.; Rahmani, H. and Mollaei, M., 2009. An Investigation on morphology, age and growth of Capoeta capoeta gracilis in Zarrin-Gol stream, Golestan Province of Iran. Journal of Agricultural Sciences and Natural Resources. Vol. 16, No. 1, pp: 54-63. (Farsi)
16
Guill, M.J.; S, H.C. and C, H.D., 2003. Body shape variation within and among three species of darters (Perciformes: Percidae). Ecology of Freshwater Fish. Vol. 12, No. 2, pp: 134-140.
17
Haghighi, E.; Satari, M.; Dorafshan, S.; Keivani, Y.; Khoshkholgh, M. and Moosavi-Sabet, S.H., 2012. Comparative morphology of Khayateh (Cyprinidae: Alburnoides eichwaldii) in Kargan-Rood and Chaloos Rivers using wireframe network. Journal of Applied Ichthyological research. Vol. 1, No. 1, pp: 41-52. (Farsi)
18
Hammer, Ø., 2012. PAST: Paleontological Statistics, Natural History Museum University of Oslo, Oslo.
19
Hossain, S., 2014. Reproductive Characteristics of Bele, Glossogobius giuris from Mithamoin Haor, Kissorgonj, Bangladesh. World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 6, No. 6, pp: 537-543.
20
Islam, M.N., 2004. Eco-biology of Freshwater Gobi, Glossogobius giuris (Hamilton) of the River Padma in Relation to its Fishery: A Review. Journal of Biological Sciences. Vol. 4, No. 6, pp: 780-793.
21
Klinkhardt, M.; Tesche, N. and Greven, H., 1995. Database of Fish Chromosomes, Westarp Wissenschaften, Magdeburg.
22
Mahilum, J.J.; Camama, C.; Lalisan, J.A. and Vedra, S.A., 2013. Morphology of Goby Species, Glossogobius celebius (Valenciennes 1837) and Glossogobius giuris (Hamilton 1822) in Lake Lanao Mindanao, Philippines. International Journal of Research in BioSciences. Vol. 2, No. 3, pp: 66-78.
23
McGee, M.D. and Wainwright, P.C., 2013. Sexual dimorphism in the feeding mechanism of threespine stickleback. The Journal of Experimental Biology. Vol. 216, pp: 835-840.
24
Moosavi, M.; Nasri, M. and Eagderi, S., 2014. Phenotype plasticity of Bigmouth Lotak, Cyprinion macrostomum Heckel, 1843 from Tigris basin using geometric morphometrics method. In: The second Iranian Conference of Ichthyology, Karaj. University of Tehran. (Farsi)
25
Moyle, P.B. and Cech, J.J., 2004. Fishes: An Introduction to Ichthyology, Pearson Prentice Hall, India.
26
Nasri, M.; Eagderi, S.; Farahmand, H. and Hashemzade SegharLoo, I., 2013. Body shape comparison of Cyprinion macrostomum (Heckel, 1843) and Cyprinion watsoni (Day, 1872) using geometric morphometric method. International Journal of Aquatic Biology. Vol. 1, No. 5, pp: 240-244.
27
Nelson, J.S.; Grande, T.C. and Wilson, M.V.H., 2016. Fishes of the world, John Wiley & Sons Inc, New York.
28
Pethiyagoda, R., 1991. Freshwater fishes of Sri Lanka, Wildlife Heritage Trust of Sri Lanka, Colombo.
29
Schluter, D. and McPhail, J.D., 1992. Ecological Character Displacement and Speciation in Sticklebacks. The American Naturalist. Vol. 140, No. 1, pp: 85-108.
30
Sfakianakis, D.G.; Leris, I.; Laggis, A. and Kentouri, M., 2011. The effect of rearing temperature on body shape and meristic characters in zebrafish (Danio rerio) juveniles. Environmental Biology of Fishes. Vol. 92, pp: 197-206.
31
Smith, T.B. and Skulason, S., 1996. Evolutionary Significance of Resource Polymorphisms in Fishes, Amphibians and Birds. Annual Review of Ecology and Systematics. Vol. 27, pp: 111-133.
32
Thatcher, E.J.; Paydar, I.; Anderson, K.K. and Patton, J.G., 2008. Regulation of zebrafish fin regeneration by microRNAs. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. Vol. 105, No. 47, pp: 18384-18389.
33
Vasil'yev, V.P. and Grigoryan, K.A., 1993. Karyology of the Gobiidae. Journal of Ichthyology. Vol. 33, pp: 1-16.
34
Webster, M.M.; Atton, N.; Hart, P.J.B. and Ward, A.J.W., 2011. Habitat-Specific Morphological Variation among Threespine Sticklebacks (Gasterosteus aculeatus) within a Drainage Basin. PLoS ONE. Vol. 6, No. 6, pp: 1-10.
35
Yasemi, M.; Keivan, A.; Vosooghi, G.H.; Ahmadi, M.R.; Farzingol, M. and Fatemi, M.R., 2005. investigation of the diversity of Pleuronectiformes from Persian Gulf coastal waters, Hormozgan province using morphometrics and meristic characteristics. Journal of Marine Sciences. Vol. 4, No. 3-4, pp: 83-92. (Farsi).
36
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه فعالیت ضدمیکروبی نانوذرات ژلاتین و ژلاتین ماهی تون زردباله (Thunnus albacares) و تعیین حداقل غلظت بازدارندگی (MIC) و حداقل غلظت کشندگی (MBC)
باتوجه به بیماری های حاضر وافزایشآنتی بیوتیک ها،به طورچشمگیریمقاومتپاتوژن هابهآنتی بیوتیک ها بالارفته است. نانوتکنولوژی یکی از روش های قابل استفاده می باشد. هدف از مطالعه حاضر فعالیتضدباکترینانوذره هایژلاتین و ژلاتیندرمقابلباکتری هایپاتوژنیهم چوناشرشیاکلی، استافیلوکوکوسآرئوس و سودوموناس آئروژینوزا و مقایسه آن ها با هم و هم چنین تعیین MIC (حداقلغلظتبازدارندگی) وMBC (حداقل غلظتباکتریکشی) میباشد. ژلاتین و نانوژلاتین از ماهی تون زردباله استخراج شدند و با روشهای دیسک دیفوژن، رقتهای متوالی (برای ژلاتین ) و توربیدیمتریک (نانوذرات ژلاتین) همچنین MIC وMBC آن تعیین گردید. مقایسه سنجش فعالیت ضدباکتری ژلاتین و نانو ژلاتین نشان دادند که نانو ژلاتین (بر علیه باکتری استافیلوکوکوسآرئوس و سودوموناس آئروژینوزا ) دارای فعالیت ضدباکتری بالاتری نسبت به ژلاتین (برعلیه باکتری سودوموناس آئروژینوزا) وPبرابر024/ 0میباشد.نانوژلاتین دارایMIC وMBC پایین تری نسیت به ژلاتین بوده و P برابر با 0/024 می باشند. نانوذره هایژلاتین و ژلاتینمی تواننداثرضدمیکروبیخودرابه صورتخاصیت منحصربهفردنشاندهند.هم چنین نانوژلاتین خاصیت ضدباکتری بالاتری نسیت به ژلاتین دارد و این از خواص ویژه نانو ذرات می باشد. هم چنین با کوچک تر شدن اندازه ذرات نانوژلاتین خاصیت ضدباکتری افزایش می یابد (0/05<P این واقعیت را تایید می کند) و این واقعیت برای نانو ذرات ژلاتین علاوه بر کاربرد احتمالی دارو به آن خاصیت ضدباکتری هم می افزاید.
http://www.aejournal.ir/article_63075_62542db0154e916bc5562e6edd5fd69a.pdf
2017-12-22
167
172
نانو ذرات ژلاتین
کم ترین غلظت بازدارندگی
کم ترین غلظت کشندگی
هما
صادقی
homasadeghi61@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم وتحقیقات، تهران، ایران، صندوق پستی: 775-14515
AUTHOR
شهلا
جمیلی
shahlajamili@yahoo.com
2
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، صندوق پستی: 6116- 14155
LEAD_AUTHOR
سید مهدی
رضایت
rezayat@tums.ac.ir
3
دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم دارویی، تهران، ایران
AUTHOR
حسین
عطار
h_attar@yahoo.com
4
گروه زیست شناسی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم وتحقیقات، تهران، ایران، صندوق پستی: 775-14515
AUTHOR
فرهاد
کیمرام
farhadkeymaram@yahoo.com
5
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، صندوق پستی: 6116- 14155
AUTHOR
ایمانی، ص.؛ زاغری، ز.؛ رضائی، س . و زند، ع.، ۱۳۹۰ . بررسی اثر نانو ضدباکتریایی نانو ذرات Cro4, CoFe2روی باکتری استافیلوکوکوساورئوس. انتشارات دانشگاه علوم پزشکی فسا. شیراز. 181 صفحه.
1
سلامی، ف.؛ رستمی، خ. و اصفهانی، ز.، 1392.فعالیت ضدمیکروبی نانو ذره های کیتوزان و روش های تعیین حداقل غلظت بازدارندگی(MIC). فناوری نانو از تئوری تا کاربرد. تهران. 42 صفحه.
2
سعادتمند، م.؛ یزدانشناس، م.؛ رضائی، ز. و یوسفی، ت.، 1390. خاصیت ضدمیکروبی نانو کامپوزیت کیتوزان TioR2R و به کارگیری آن روی گاز استریل بیمارستانی.انتشارات علوم آزمایشگاهی تهران. 60 صفحه.
3
Alizadeh, H.; Salouti, M. and Shapouri, R.,2013. Intramacrophage antimicrobial effect of silver nanoparticles agaist Brucella melitensis16M.Scientialranica Journal. Vol. 3, N. 20, pp: 1035-1038.
4
Cho, M.; Gub, Y. and Kima, S., 2006. Extracting optimization and physical properties of yellowfin tuna (Thunnus albacares) skin gelatin compared to mammalian gelatins. Food Hydrocolloids. Vol. 4, No. 19, pp: 221-229.
5
Darroudi, M.; Mansor, B.; Hakimi, M.; Zamiri, R.; Khorasani zak, A. and Zargar, M., 2013. Preparation, characterization, and antibacterial activity of silver nanoparticles in aqueous gelatin. International Journal of Minerals, Metallurgy, and Materials. Vol. 4, No. 1, pp: 403-409.
6
Guillen, R.; Espinosa, B.; Meza, R.; Espinoza, N.; Sanchcz, L. and Chacaltana, J., 2010. Antin1icrobial Susceptibility of Brucella melitensis Isolates in Peru. Antimicrobim acienrs and ciemotiieaiy. Vol. 3, No. 12, pp: 1279-1281.
7
Lifeng, Qi.; Zirong, Xu.; Xia, J.; Caihong, H. and Xiangfei, Z., 2004. Preparation and antibacterial activity of chitosan nanoparticles. Carbohydrate Research. Vol. 1, No. 339, pp: 2693-2700.
8
Kim, S., 2006. Bioactive compound from marine process by product a review. Food Research International. Vol. 4, No. 39, pp: 383-393.
9
Mei, N.; Xuguang, L.; Jinming, D.; Husheng, J.; Liqiao, W. and Bingshe X., 2009. Antibacterial activity of Chitosan coated Ag loaded nano SioR2R composites.Carbohydrate Polimers. Vol. 4, No. 78, pp: 54-59.
10
Muhammad, A. and Hee, J., 2014. Antibacterial and Antiyeast Compounds from Marine-Derived Bacteria. Drug Journal. Vol. 5, No. 12, pp: 2913-2921.
11
Nester, E.; Anderson, D.; Robert, E.; Pearshall, N. and Nester, M.T., 2003. Microbiology. A human prospect. Vol. 3, No.14, pp: 518-521.
12
Qi, L.; Xu, Z.; Jiang, X.; Hu, C. and Zou, X., 2004. Preparation and antibacterial activity of chitosan nanoparticles. Carbohydrate research. Vol. 1, No. 339, pp: 2693-2700.
13
Raafat, D.; Bargen, V.; Hass, A. and Sahi, H., 2008, Insights into the mode of action of chitosan as an antibacterial compound. Applied Environment Microbiology. Vol. 12, No. 74, pp: 3764-3773.
14
Salem, W.; Leitner, D.; Zingl, F.; Schratter, G.; Prassl, R.; Goessler, W.; Reidl, J. and Schild, S., 2015. Antibacterial activity of silver and zinc nanoprticles against Vibrio cholerae and enterotoxic Escherichia coli. International journal of medical microbiology. Vol. 1, No. 305, pp: 85-95.
15
Vorgelegt, V., 2006. Gelatin nanoparticles as delivery system for nucleotide-based drugs. Hotverleg pub. USA. 963 p.
16
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی شاخص های تولیدمثلی سارم دهان بزرگ (Scomberoides commersonnianus) در شمال غرب خلیج فارس
سارم دهان بزرگ از گونه های مهم تجاری از خانواده گیش ماهیان است که ارزش غذایی فراوان دارد. تعیین زمان رسیدگی جنسی و تخم ریزی در مطالعات زیست شناسی، رفتارشناسی، مدیریت صید و تکثیر و پرورش آبزیان ضروری است. شاخص های گنادوسوماتیک، هپاتوسوماتیک، طول اولین بلوغ و نسبت جنسی جهت تعیین زمان تولیدمثل، رسیدگی جنسی و بلوغ این ماهی در یک دوره نمونه برداری 15 ماه مورد بررسی قرار گرفت. نتایج نشان داد نسبت جنسی بین نر و ماده اختلاف معنی داری وجود ندشت. طول 50 درصد بلوغ برای جنس ماده 59/5 و در جنس نر 50/2 سانتی متر برآورد شد. این ماهی یک بار در سال تخم ریزی داشته که از فروردین تا مرداد ماه به طول می انجامد و شاخص گنادوسوماتیک در خرداد ماه بیش ترین مقدار را داشته است.
http://www.aejournal.ir/article_61670_f4931e2294809f95b5e47fa007af7fe8.pdf
2017-12-22
173
182
گنادوسوماتیک
هپاتوسوماتیک
Scomberoides commersonnianus
طول 50 درصد بلوغ
سیده زهرا
معصومی زاده
zmasoomi@yahoo.com
1
گروه شیلات، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
جمیله
پازوکی
pazooki2001@sbu.ac.ir
2
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران
AUTHOR
تورج
ولی نسب
t_valinassab@yahoo.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، تهران، صندوق پستی: 6116- 14155
AUTHOR
اداره آمار و صید شیلات ایران. 1393. دفتر برنامه ریزی گروه آمار و مطالعات توسعه شیلاتی، سالنامه آماری سازمان شیلات ایران.
1
تقویمطلق، ا.؛سیف آبادی، س.ج.؛حسینی، ع. واحمدیانحسینی، ش.، 1383. شاخص های رشد و میزان مرگ و میر ماهی سارم (Scomberoides commersonnianus) در سواحل جنوب شرقی ایران، مجله علوم دریایی ایران. دورة ۳، شمارة ۴، صفحات 5 تا 10.
2
درافشان، س. و ابراهیم زاده، س.م.، 1389. زیست شناسی تولید مثل ماهی، انتشارات دانشگاه صنعتی اصفهان. 198 صفحه.
3
معصومی زاده، س.ز.؛ پازوکی، ج. و ولی نسب. ت.، 1393. بررسی ترکیب غذایی و اثر فصل، جنسیت، بلوغ و طول بر شاخص گاستروسوماتیک سارم دهان بزرگ (Scomberoidescommersonnianus) در شمال غربی خلیج فارس (استان خوزستان)، مجله زیست شناسی دریا. سال 6، شماره 23، صفحات 69 تا 80.
4
معصومی زاده، س.ز.، 1394. تعیین خصوصیات زیستی ماهی سارم دهان بزرگ (Scomberoides commersonnianus) در آب های شمال غرب خلیج فارس (استان خوزستان). رساله دکتری، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه شهید بهشتی. 114صفحه.
5
ولی نسب، ت.، 1392. فرهنگ جامع اسامی گونه های ماهیان خلیج فارس، دریای عمان و دریای خزر (و حوزه آبریز)، انتشارات موج سبز. 273صفحه.
6
هادی زاده، ز.؛ مورکی، ن. و معینی، س.، 1392. شناسایی ترکیب اسیدهای آمینه و اسیدهای چرب در گوشت ماهی سارم دهان بزرگ (Scomberoides commersonnianus) در خلیج فارس. زیست شناسی دریا. شماره 17، صفحات 35 تا 50.
7
Abou-Seedo, F.S.; Dadzie, S. and Al-Kanaan, K.A., 2003. Sexuality, sex change and maturation patterns in the yellowfin seabream, Acanthopagrus latus (Teleostei: Sparidae) (Hottuyn, 1782). Journal of Applied Ichthyology. Vol. 19, pp: 65-73.
8
Almeida, P.R., 2003. Feeding ecology of Liza ramada (Risso, 1810) (Pisces, Mugilidae) in a south-western estuary of Portugal, Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 57, pp: 313-323.
9
Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology South Asian Pub.PVt. Ltd.New Dehli.157 p.
10
Ferreri, R.; Basilone, G.; D’Elia, M.; Traina, A.; Saborido-Rey, F. and Mazzola, S., 2009. Validation of macroscopic maturity stages according to microscopic histological examination for European anchovy, Marine Ecology. Vol. 30, No. 1, pp :181-187.
11
Fisher, W. and Bianchi, G., 1984. FAO species identification sheets for fishery purposes, Western Indian Ocean, (Fishing area 51) DANIDA. Vols. 1-6.
12
Griffiths, S.; Fry, G. and Velde, T., 2005. Age, growth and reproductive dynamics of the Talang queenfish (Scomberoides commersonnianus) in northern Australia. Final report to the National Oceans Office, CSIRO. 39 p.
13
Hajisamae, S.; Chou, L.M. and Ibrahim, S., 2003. Feeding habits and trophic organization of the fish community in shallow waters of an impacted tropical habitat. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 58, pp: 89-98.
14
Hoar, W.S.; Randal, D.Y. and Donaldson, E.M., 1983. Fish physiology. Academic Press. London.Vol. Lx, 477.
15
International Game Fish Association. 2001. Database of IGFA angling records until 2001. IGFA, Fort Lauderdale, USA. URL: http://www.fishbase.org.
16
King, M., 1995. Fisheries biology, assessment and management. Fishing News Books, London, UK. 314 p.
17
Makeeva, A.P., 1992. Embriologia Rib, (Fish Embriology), Izdatelstvo Moskovskogo Universiteta, Moscow. pp: 35-37.
18
Panhwar, Sh.; Qamar, N. and Jahangir, Sh., 2014. Fishery and Stock Estimates of Talang Queenfish, Scomberoides commersonnianus (Fam: Carangidae) from the Arabian sea coast of Pakistan, Pakistan Journal of Agricultural Sciences. Vol. 51, No. 4, pp: 1011-1016.
19
Pena Rivas, L.; Azzurro, E. and Lloris, D., 2013. First record of the Atlantic bumper Chloroscombrus chrysurus (Teleostei: Carangidae) in the Mediterranean Sea, Journal of Fish Biology. Vol. 82, No. 3, pp: 1064-1067.
20
Potts, G.W. and Wootton, R.J. 1989. Fish Reproduction. Strategies and Tactics. Academic Press. 410 p.
21
Rajaguru, A., 1992. Biology of two co-occurring tonguefishes, Cynoglossus arel and C. lida (Pleuronectiformes: Cynoglossidae), from Porto Nova, southeast coast of India. Fishery Bulletin. Vol. 90, pp: 328-367.
22
Smith-Vaniz, W.F., 1984. FishBase. World Wide Web electronic publication. URL: http://www.fishbase.org.
23
Thulasitha, W.S. and Sivashanthini, K., 2013. Reproductive characteristics of doublespotted Queenfish, Scomberoides lysan (Actinopterygii: Perciformes: Carangidae), from Sri Lankan waters: Implications for fisheries management. Acta Ichthyologica et Piscatoria. Vol. 43, No. 1, pp:7-13.
24
www.ngdir.ir/geoportalinfo.
25
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تجمع غلظت فلزات سنگین (سرب،کادمیوم و جیوه) در عضله ماهی گوازیم دم رشته ای (Nemipterus japonicus) و ارزیابی ریسک ناشی از مصرف آن (مطالعه موردی: آب های شمال غرب خلیج فارس)
این مطالعه به بررسی غلظت سه فلز سرب، کادمیوم و جیوه در بافت عضله ماهی گوازیم دم رشته ای(Nemipterus japonicus) در آب های شم الغرب خلیج فارس بههمراه برآورد ریسک ناشی از مصرف عضله این ماهی برای انسان می پردازد. فلزات مورد نظر در نمونه های تهیه شده (30 نمونه) پس از آماده سازی و انجام فرآیندهای استخراج و هضم، با استفاده از دستگاه جذب اتمی مجهز اندازه گیری گردیدند. نتایج نشان داد میانگین غلظت (±SD) در بافت عضله ماهی گوازیم دم رشته ای مربوط به فلزات سرب و جیوه به ترتیب 0/246±2/00 ، 0/026±1/02، میلیگرم بر کیلوگرم وزن خشک می باشد. بالاترین غلظت فلزات سنگین سرب و جیوه در عضله گونه مورد مطالعه به ترتیب 2/40 و 1/09 و پایین ترین غلظت به ترتیب 1/55 و 1/00 میلی گرم بر کیلوگرم وزن خشک به دست آمد و کادمیم قابل جذب در تمام نمونه ها کم تر از حد تشخیص دستگاه بود. فاکتورهای جذب روزانه(DI) برای عناصرسرب،کادمیم وجیوه به ترتیب 46/56، 1/62 و 23/74 میلی گرم بر شخص در روز و شاخص ریسک (HQ) به ترتیب 1، 1 و 0/874 به دست آمدند. مقایسه با استانداردهای شاخص نشان می دهد که مقدار سرب در عضله گوازیم دم رشته ای بالاتر از حد مجاز استاندارد سازمان بهداشت جهانی(WHO) و برابر با سازمان وزارت کشاورزی، شیلات و غذای انگلستان (UKMAFF) می باشد ولی از نظر استاندارد سازمان غذا و داروی آمریکا(FDA) در حد مجاز بوده و مقدار جیوه از هر سه استاندارد شاخص در این تحقیق بالاتر بود. با توجه به عدد شاخص ریسک(HQ) ، مصرف ماهی گوازیم دم رشته ای در این منطقه از لحاظ سرب،کادمیم و جیوه خطری برای مصرف کنندگان نخواهد داشت. غلظت عناصر سرب و جیوه در دو جنس نر و ماده در ماهی گوازیم دم رشته ای با یکدیگر اختلاف معنی داری نداشت (0/05<p)، ولی در مقدار غلظت کادمیوم در جنس های نر و ماده اختلاف معنی داری وجود داشت (0/05>p). علاوه بر این بین غلظت جیوه در عضله ماهی گوازیم دم رشته ای با اندازه (طول کل و طول چنگالی) اختلاف معنی داری وجود نداشت (0/05<p) و بین مقدار غلظت فلز کادمیم با اندازه (طول کل و طول چنگالی) اختلاف معنی داری وجود داشت (0/05>p)، برای فلز سرب نیز بین مقدار غلظت فلز و اندازه طول چنگالی اختلاف معنی داری وجود نداشت (0/05<p)، اما بین غلظت فلز و طول چنگالی اختلاف معنی داری وجود داشت (0/05>p).
http://www.aejournal.ir/article_63139_a883fbc98c44f85b41dcad5a5f961d73.pdf
2017-12-22
183
192
فلزات سنگین
گوازیم دم رشته ای
جذب روزانه
شاخص ریسک
خلیج فارس
طاهره
خندانی شراهی
bahare.khandani20@gmail.com
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم وتحقیقات، تهران، ایران، صندوق پستی: 775-14515
AUTHOR
لعبت
تقوی
taghavi_lobat@yahoo.com
2
دانشکده محیط زیست و انرژی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم وتحقیقات، تهران، ایران، صندوق پستی: 775-14515
LEAD_AUTHOR
تورج
ولی نسب
t_valinassab@yahoo.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، صندوق پستی: 6116- 14155
AUTHOR
خسرو
آیین جمشید
khosrow.aein@gmail.com
4
پژوهشکده میگو کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بوشهر، صندوق پستی: 1374
AUTHOR
امینی رنجبر، غ. و علیزاده، م.، 1378. اندازه گیری مقادیر فلزات سنگین (Cr,Zn,Cu,Pb,Cd ) در سه گونه از کپور ماهیان پرورشی. پژوهش و سازندگی. شماره 40، صفحات 41 تا 42.
1
امینی رنجبر، غ. و ستوده نیا، ف.، 1384. تجمع فلزات سنگین در بافت کبد و عضله ماهی کفال طلایی (Lizzie auratus) دریای خزر در ارتباط با برخی مشخصات بیومتریک (طول استاندارد، وزن، سن، جنسیت). مجله علمی شیلات ایران. شماره 3، صفحات 56 تا 61.
2
الصاق، ا.، 1389. تعیین برخی فلزات سنگین و عضله ماهی سفید (Rutilus frisii kutum) و کپور معمولی (Cyprinus carpio) در جنوب مرکزی دریای خزر. نشریه دامپزشکی. شماره 89، صفحات 22 تا 35.
3
چراغی، م.؛ اسپرغم، ا. و نوریائی، م.ح.، 1391. ارزیابی ریسک کادمیوم ناشی از مصرف ماهی شیربت (Barbus grypus) رودخانه اروند. فصلنامه اکوبیولوژی تالاب. دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 4، شماره 13، صفحات 37 تا 49.
4
حسینی،س.م.؛میرغفاری،ن.؛محبوبی صوفیانی،ن.و حسینی، س.و.، 1390. ارزیابی ریسک جیوه ناشی از مصرف ماهی سفید دریای خزر (Rutilus frisii kutum) در استان مازندران. نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. دوره ۶۴ ، شماره3، صفحات 74 تا 81.
5
دبیری، م.، 1385. آلودگی محیط زیست (هوا، آب، خاک، صوت). ویرایش جدید، نشر اتحاد. 171 صفحه.
6
دادالهی، س.ع.؛ نبوی، س.م.ب. و خیرور، ن.، 1387. ارتباط برخی مشخصات زیست سنجی با تجمع فلزات سنگین در بافت عضله و آبشش ماهی شیربت (Barbus grypus) در رودخانه اروندرود. مجله علمی شیلات ایران. سال 17، شماره4، صفحات 134 تا 147.
7
دفترطرح و برنامه سازمان شیلات ایران. 1393. کتابچه آمار صید شیلات ایران. انتشارات سازمان شیلات ایران. 97 صفحه.
8
شریف فاضلی، م.؛ ابطحی، ب. و صباغ کاشانی، آ.، 1384. سنجش تجمع فلزات سنگین سرب، نیکل و روی در بافت های ماهی کفال طلایی (Lizzie auratus) سواحل جنوبی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. سال 14، شماره1، صفحات 11 تا 23.
9
شهاب مقدم، ف.؛ اسماعیلی ساری، ع.؛ ولی نسب، ت. و کریم آبادی، م.، 1389. مقایسه تجمع فلزات سنگین در عضله سپرماهی چهارگوش(Himantura gerrardi) و گیش چشم درشت (Selar crumenophthalmus) خلیج فارس. مجله علمی شیلات ایران. سال 19، شماره 2، صفحات 19 تا 28.
10
صباغ کاشانی، آ.، 1380. تعیین میزان برخی فلزات سنگین در عضله، کبد،کلیه، آبشش و تخمدان ماهی کفال Liza aurataدر سواحل جنوبی دریای خزر. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی. دانشگاه تربیت مدرس. 74 صفحه.
11
صادقی راد، م.؛ امینی رنجبر، غ.؛ ارشد، ع. و جوشیده، ه.، 1384. مقایسه تجمع فلزات سنگین (روی، مس، کادمیوم، سرب، جیوه) در بافت عضله و خاویار دو گونه تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus) و ازون برون (Acipenser stellatus) در حوضه جنوبی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. سال 14، شماره3، صفحات 87 تا 96.
12
صدوق نیری، ع.؛ نیک پور، ی.؛ رجب زاده، ا.؛ محبوبی صوفیانی، ن. و احمدی، ر.، 1389. اندازه گیری فلزات سنگین کادمیوم، نیکل، کبالت، مس و سرب در بافت های ماهی صبور،Tenualosa ilisha، درشمال غرب خلیج فارس و رابطه آن با طول و وزن. مجله علوم آبزیان. سال 1، شماره 1، صفحات 25 تا 36.
13
صادقی، م.؛ امتیازجو، م. و دقیقی روچی، ر.، 1392. تعیین میزان فلزات سنگین (Pb,Cd) در بافت های کبد و عضله ماهی سنگسر معمولی (Pomadasyskaakan) در آب های استان هرمزگان (بندر عباس). همایش ملی مهندسی ومدیریت کشاورزی، محیط زیست و منابع طبیعی پایدار.
14
ولی نسب،ت.،1392.فرهنگ جامع اسامی ماهیان خلیج فارس، دریای عمان و دریای خزر و حوضه آبریز. انتشارات موج سبز. 225 صفحه.
15
Agusa, T.; Kainito, T.; Tanabe, S.; Pourkazemi, M. and Aubrey, D.G., 2004. Concentrations of trace elements in muscle of sturgeons in the Caspian Sea. Mar Pollut Bull. Vol. 49, No. 9-10, pp: 789-800.
16
Anan, Y.; Kunito, T.; Tanabe, S.; Mitrofanov, I. and Aubrey, D.G., 2005. Trace element accumulation in fishes collected from coastal waters of the Caspian Sea. Mar Pollut Bull. Vol. 51, No. 8-12, pp: 882-888.
17
APHA (American Public Health Association). 2005. Standard Methods for the Examination of Water and Waste Water. American Public Health Association.
18
Berlin, M., 1985. Handbook of the toxicology of metals. Elsevier Science Publishers, London, UK. 2 Editors. Vol. 2, pp: 376-405.
19
Biney, C.A. and Ameyibor, E., 1992. Trace metal concentrations in the pink shrimp Penaeus notialis, from the coast of Ghana, Water, Air Soil Pollution. Vol. 63, pp: 273-279.
20
Chen, Y.C. and Chen, M.H., 2001. Heavy metal concentration in nine species of fishes caught in coastal water off Ann-Ping. S.W. Taiwan. Journal of Food and Drug Analysis. Vol. 9, pp: 107-114.
21
Canli, M. and Atli, G., 2003. The relationships between heavy metal (cd, cr, cu, fe, pb, zn) levels and the size of six Mediterranean fish species, Enviroment. Pollution. Vol. 121, pp: 129-136.
22
Demirak, A.; Yilmaz, F.; Tuna, A.L. and Ozdemir, N., 2006. Heavy metals in water, sediment and tissues of Leuciscus cephalus from a stream in southwestern Turkey. Chemosohere. Vol. 63, No. 9, pp: 1451-1458.
23
Silva, E.; Viana, Z.C.V.; Souza, N.F.A.; Korn, M.G.A. and Santos, V.L.C.S., 2015. Assessment of essential elements and chemical contaminants in thirteen fish species from the Bay Aratu, Bahia, Brasil. pp: 1519-1590.
24
Esteban, A.; Nahuel, F.S.; Alejandra, V.V.; Walter, G. and Alicia, F.C., 2015. Heavy metals and trace elements in muscle of silverside (Odontesthesbonariensis) and water from different environments Argentina): aquaticpollution and consumption effect approach. pp: 102-108.
25
EPA. 2005. Risk-Based Concentration Table, April, 2005. U.S. EPA, Region 3, Philadelphia, PA.
26
Filazi, A.; Baskaya, R. and Kum, C., 2003. Metal concentration in tissues of the Black Sea fish Lizzia auratus from Sinop-Icliman, Turkey. Human & Experimental Toxicology. Vol. 22, pp: 85-87.
27
Moopam. 1999. Manual of Oceanographic Observation and Pollutant Analysis Methods.
28
Madany, I.M.; Wahab, A.A.A. and Al-Alawi, Z., 1996. Trace metals concentrations in marine organisms from the coastal areas of Bahrain, Arabian Gulf, Water, Air Soil Pollution. Vol. 91, pp: 233-248.
29
Merian, E., 1991, Metals and Their Compounds in the Environment Occurrence, Analysis and Biological Relevance. VCH, Weinheim.
30
MAFF. 1995. Monitoring and surveillance of non-radioactive contaminant in the aquatic environment and activities regulating the disposal of water at sea, 1993. Directorate of Fisheries Research, Lowesttoft.
31
Pourang, N.; Tanabe, S.; Rezvani, S. and Dennis, J.H., 2005. Trace elements accumulation in edible tissues of five sturgeon species from the Caspian Sea. Environ Monit Assess. Vol. 100, No. 1-3, pp: 89-108.
32
Reyahi Khoram, M.; Setayesh Shiri, F. and Chraghi, M., 2015. Study of the heavy metals (Cd and Pb) content in the tissues of rainbow trouts from Hamedan coldwater fish farms. pp: 858-869.
33
Ray, D.; Banerjee, S.K. and Chatterjee, M., 1990. Bioaccumulation of Nickle and Vanadium in tissues of the cat fish (Clarias batrachus). Journal of Inorganic Biochemistry. Vol. 36, No. 3, pp: 169-173.
34
Ruelle, R. and Henry, C., 1994. Life history observation and contaminant evalation of pallid sturgeon. Final report. U.S. Fish and Wildlife Service Region 6. Contaminants program.
35
Radojevic, M. and Bashkin, V.N., 1999. Practical Environmental Analysis. The Royal Society of Chemistry, U.K. 466 p.
36
Sabry, M. and Ahmed, A., 2015. Heavy metal and trace element contents in edible muscle of three commercial fish species, and assessment of possible risks associated with their human consumption in Saudi Arabia. pp: 271-278.
37
Siapatis, A.; Giannoulaki, M.; Valavanis, V.D.; Palialexis, A.; Schismenou, E.; Machias, A. and Somarakis, S., 2008. Modelling potential habitat of the invasive ctenophore Mnemiopsis leidyi in Aegean Sea. Hydrobiologia. Vol. 612, pp: 281-295.
38
US Agency for Toxic Substances and Disease Registry. 1999. Lead.Toxicological profiles. Atlanta: Centers for Disease Control and Prevention. PB/99/166704.
39
Xiaojie, L.; Jinping, C.; Yuling, S.; Shunichi, H.; Li, W.; Zheng, L.; Mineshi, S. and Yuanyuan, L., 2008. Mercury concentration in hair samples from Chinese people in coastal cities. J. Enviro. Sci. Vol. 20, pp: 1258-1262.
40
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی نیاز پروتئینی بچه ماهیان تمام ماده تریپلوئید قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) شرکت آکوآلند فرانسه
پروتئین از اجزای اصلی تشکیل دهنده بدن ماهیان است بنابراین تامین مقادیرکافی آن در جیره برای رشد بهینه و مطلوب مورد نیاز است. در این آزمایش تغذیه ای، تاثیر چهار سطح پروتئین (38، 43، 48 و 53 درصد) به منظور تعیین بررسی سطح مناسب پروتئین در تغذیه بچه ماهیان تمام ماده تریپلوئید قزل آلای رنگین کمان (Onchorhynchus mykiss) بررسی شد. تعداد 3000 عدد ماهی با میانگین وزن اولیه 0/5 گرم چهار بار در روز به میزان 5 درصد وزن بدن طی یک دوره شصت و پنج روزه تغذیه شدند. نتایج نشان داد که با افزایش میزان پروتئین جیره، وزن نهایی و نرخ رشد ویژه افزایش معنی داری یافت (0/05>P) بهترین ضریب تبدیل غذایی در ماهیان تغذیه شده با جیره 48 درصد پروتئین به دست آمد که اختلاف معنی داری با جیره حاوی 53 درصد پروتئین نداشت (0/05<P). با توجه به نتایج تحقیق حاضر، به نظر می رسد جیره حاوی 48 درصد پروتئین برای رشد بچه ماهیان تمام ماده تریپلوئید قزل آلای رنگین کمان در محدوده وزنی مطالعه شده مناسب است.
http://www.aejournal.ir/article_59502_04156461cd8ee59218d5d13f666996dc.pdf
2017-12-22
193
198
قزل آلای رنگین کمان
تغذیه
پروتئین جیره و شاخص های رشد
عباسعلی
حاجی بگلو
alihajibeglou@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 487-49175
LEAD_AUTHOR
رقیه
صفری
rsafari@gau.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 487-49175
AUTHOR
ابراهیمی، ع. و بیرقدار، ا.، 1385. تغذیه و نیازهای غذایی ماهیان در آبزی پروری (با تاکید بر گونه های قابل پرورش در ایران) (ترجمه(، انتشارات جهاد دانشگاهی واحد صنعتی اصفهان. صفحات 1 تا 46.
1
رضایی، ج. و درویشی، ب.، 1386. ارزیابی اقتصادی مزارع پرورش ماهی قزل آلا در استان ایلام. پژوهش و سازندگی. شماره 76، صفحات 150 تا 160.
2
ستاری، م.؛ شاهسونی، د. و شفیعی، ش.، 1383. ماهی شناسی (2). نشر حق شناس. 502 صفحه.
3
سرپناه، ع.؛ مشکوه روحانی، آ. و یاسمی، م.، 1395. اثر سطوح مختلف پروتئین جیره بر شاخص های رشد ماهی اسکار (Astronotus ocellatus). محیط زیست جانوری. شماره 3، صفحات 245 تا 250.
4
میراب بروجردی، م. و اخلاقی، م.، 1391. بررسی اثر بی هوش کنندگی گل میخک بر ماهی قزل آلا و تعیین 50 LC آن. همایش ملی فرآورده های طبیعی و گیاهان دارویی. دانشگاه علوم پزشکی خراسان شمالی. بجنورد. صفحه 390.
5
Ali, M.Z. and Jauncey, K., 2005. Approaches to optimizing dietary protein to energy ratio for African catfish Clarias gariepinus (Burchell, 1822). Aquacture Nutrition. Vol. 11, pp: 95-101.
6
Anderson, R.J.; Kienholz, E.W. and Flickinger, S.A., 1981. Protein requirements of small mouth bass (Micropterus dolomieu) and largemouth bass. Journal of Nutrition. Vol. 111, pp: 1085-1097.
7
AOAC. 2005. Official methods of analysis. (18th Ed.). Maryland, USA: Association of Official Analytical Chemist International.
8
Azevedo, P.A.; Bureau, D.P.; Leeson, S. and Cho, C.Y., 2002. Growth and efficiency of feed usage by Atlantic salmon (Salmosalar) fed diets withdifferent dietary protein: Energy ratios at two feeding levels. Fisheries Sciences. Vol. 68, pp: 878-888.
9
Bekcan, S.; Dogankaya, L. and Cakirogullari, G.C., 2006. Growth and body composition of European Catfish (Silurus glanis L.) fed diet containing different percentages of protein. The Israeli Journal of Aquaculture- Bamidged. Vol. 58, pp: 137-142.
10
Bell, J.G.; Henderson, R.J.; Tocher, D.R.; McGhee, F.; Dick, J.R.; Porter, A.; Smullen,R.P. and Sargent, J.R., 2003. Substituting fish oil with crude palm oil in the diet of Atlantic salmon (Salmo salar) affects muscle fatty acid composition and hepatic fatty acid metabolism. Journal of Nutrition. Vol. 132, pp: 222-230.
11
Boujard, T.; Gélineau, A.; Covés, D.; Corraze, G.; Dutto, G.; Gasset, E. and Kaushik, S.J., 2004. Regulation of feed intake, growth, nutrient and energy utilization in European sea bass (Dicentrarchus labrax) fed high fat diets. Aquaculture. Vol. 231, pp: 529-545.
12
Bureau, D.P.; Kaushik, S.J. and Cho, C.Y., 2002. Bioenergetics. In: Halver, J.E. and Hardy, R.W. (Eds.). Fish Nutrition, 3rd edn. Academic Press, California. pp: 1-59.
13
Chai, X.J.; Ji, W.X.; Han, H.; Dai, Y.X. and Wang, Y., 2013. Growth, feed utilization, body composition and swimming performance of giant croaker, Nibea japonica Temminck and Schlegel, fed at different dietary protein and lipid levels. Aquaculture Nutrition. Vol. 19, pp: 928-935.
14
Cho, S.H.; Lee, S.M.; Lee, S.M. and Lee, J.H., 2005. Effect of dietary protein and lipid levels on growth and body composition of juvenile turbot (Scophthalmus maximus L.) reared under optimum salinity and temperature conditions. Aquaculture Nutrition. Vol. 11, pp: 235-240.
15
Chou, R.L.; Su, M.S. and Chen, H.Y., 2001. Optimal dietary protein and lipid levels for juvenile cobia (Rachycentron canadum). Aquaculture. Vol. 193, pp: 81-89.
16
Debnath, D.; Pal, A.K.; Sahu, N.P.; Jain,K.K.; Yengkokpam, S. and Mukherjee, S.J., 2005. Effect of dietary microbial phytase supplementation on growth and nutrient digestability of Pangasius pangasius fingerlings. journal of Aquaculture Research. Vol. 36, pp: 180-187.
17
Ebrahimi, G.; Ouraji, H.; Firouzbakhsh, F. and Makhdomi, C., 2013. Effect of dietary lipid and protein levels with different protein to energy ratios on growth performance, feed utilization and body composition of Rutilus frisii kutum fingerlings. Aquaculture Research. Vol. 44, pp: 1447-1458.
18
Gao, W.; Liu, Y.J.; Tian, L.X.; Mai, K.S.; Liang, G.Y.; Yang, H.J.; Huai, M.Y. and Luo, W.J., 2011. Protein-sparing capability of dietary lipid in herbivorous and omnivorous freshwater finfish: a comparative case study on grass carp (Ctenopharyngodon idella) and tilapia (Oreochromis niloticus × O. aureus) Aquaculture Nutrition. Vol. 17, pp: 2-12.
19
Halver, J.E., 1989. Fish Nutrition. 2nd edition, Academic press. London. 798 P.
20
Hardy, R.W.; Sugiura, S.H.; Babbitt, J.K. and Dong,F.M., 2000. Utilization of fish and animal by-product meals in low-pollution feeds for rainbow trout (Oncorhynchusmykiss). Aquaculture Research. Vol. 31, pp: 585-593.
21
Higgs, D.A.; Fagerlund, U.H.M.; Mcbride, J.R.; Plotnikoff, M.D.; Dosanjh, B.;Markert, J.R. and Davidson, J., 1983. Protein quality of altex canola meal for juvenile chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha) considering dietary protein and 3,5,3- triiodo-L-thyronine content. Aquaculture. Vol. 34, pp: 213-238.
22
Lee, S.M. and Kim, K.M., 2005. Effect of various levels of lipid exchanged with dextrin at different protein level in diet on growth and body composition of juvenile flounder Paralichthys olivaceus. Aquaculture Nutrition. Vol. 11, pp: 435-442.
23
Lee, S.M.; Park, C.S. and Bang, I.C., 2002. Dietary protein requirement of young Japanese flounder Paralichthys olivaceus fed isocaloric diets. Fisheries Science. Vol. 68, pp: 158-164.
24
Li, X.F.; Liu, W.B.; Jiang, Y.Y.; Zhu, H. and Ge, X.P., 2010. Effects of dietary protein and lipid levels in practical diets on growth performance and body composition of blunt snout bream (Megalobrama amblycephala) fingerlings. Aquaculture. Vol. 303, pp: 65-70.
25
Lupatsch, I.; Kissil, G.W.M.; Sklan, D. and Pfeffer, E., 2001. Effects of varying dietary protein and energy supply on growth, body composition and protein utilization in gilthead seabream (Sparus aurata L.). Aquaculture Nutrition. Vol. 7, pp: 71-80.
26
Mahmud, S.; Chakraborty, S.C. and Das, M., 1996. Performance of rainbow trout (Onchorhynchus mykiss) fed on different dietary protein with fixed energy ration. Asian Australasian Journal of Animal Sciences. Vol. 9, pp: 31-35.
27
Maldonado-García1, M.; Rodríguez-Romero1, J.; Reyes Becerril, M.; Álvarez-González, C.; Civera-Cerecedo, R. and Spanopoulos, M., 2012. Effect of varying dietary protein levels on growth, feeding efficiency, and proximate composition of yellow snapper Lutjanus argentiventris (Peters, 1869). Latin American Journal of Aquatic Research. Vol. 40, pp: 1017-1025.
28
Nankervis, L. and Matthews, S.J., 2000. Effect of dietary nonprotein energy source on growth and triiodothyronine levels in juvenile barramundi, Lates calcarifer. Aquaculture. Vol. 191, pp: 323-335.
29
NRC(NationalResearchCouncil).1993. Nutrient Requirements of Fish. National Academic Press, Washington. 1290 P.
30
Perez, L.; Gonzalez, H.; Jover, M. and Fernandez-Carmona, J., 1997. Growth of Europen sea bass (Dicentrarchus labrax) fingerlings fed extruded diets containing varying levels of protein, lipid and carbohydrate. Aquaculture. Vol. 156, pp: 183-193.
31
Pillay, T.V.R., 1990. Aquaculture: Principles and practices, Fishing News Book. Blackwell scientific publications, Ltd, Oxford, London, UK. 575 P.
32
Robinson, E.H.; Li, M.H. and Manning, B.B., 2000. Evaluation of various concentrations of dietary protein and animal protein for pondraised channel catfih, Ictalurus punctatus, fed to satiation or at a restricted rate. World Aquaculture. Vol. 31, pp: 503-5100.
33
Sà, R.; Pousáo-Ferreira, P. and Oliva-Teles, A., 2006. Effect of dietary protein and lipid levels on growth and feed utilization of white seabream (Diplodus sargus) juveniles. Aquacture Nutrition. Vol. 21, pp: 310-321.
34
Shiau, S.Y., 2002. Tilapia, Oreochromis spp. In: Webster, C.D. and Lim, C.E. (Eds.). Nutrient Requirements and Feeding of Finfish for Aquaculture. CABI Publishing, New York. pp: 273-292.
35
Shiau, S.Y. and Lan, C.W., 1996. Optimum dietary protein level and protein to energy ratio for growth of groupe (Epinephelus malabaricus). Aquaculture. Vol. 145, pp: 259-266.
36
Silva, P.; Andrade, C.A.P.; Timoteo, V.M.F.A.; Rocha, E. and Valente, L.M.P., 2006. Dietary protein, growth, nutrient utilization and body composition of juvenile blackspot seabream, Pagellus bogaraveo (Brunnich). Aquaculture Research. Vol. 37, pp: 1007-1014.
37
Singh, P.K.; Gaur, S.R.; Barik, P.; Sulochana, S. and Singh, S., 2005. Effect of protein levels on growth and digestibility in the Indian Major Carp, Labeo rohita (Hamilton) Using Slaughter House Waste as the Protein Source. International Journal of Agriculture and Biology. Vol. 7, pp: 939-941.
38
Vergara, J.M.; Fernández-Palacios, H.; Robaina, L.; Jauncey, K.; Higuera, M.D.L. and Izquierdo, M., 1996. The effects of varying dietary protein leve1 on the growth, feed efficiency, protein utilization and body composition of Gilthead Sea Bream Fry. Fisheries Science. Vol. 62, pp: 620-623.
39
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی ایمنی زایی واکسن دوگانه استرپتوکوکوزیس/لاکتوکوکوزیس در ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
در این پژوهش ایمنی زایی واکسن دوگانه استرپتوکوکوس/لاکتوکوزیس در ماهی قزل آلای رنگین کمان ارزیابی شد. تعداد 240 قطعه ماهی قزل آلا با متوسط وزن 1±30 گرم به دو گروه، هر گروه در سه تکرار تقسیم شدند. ماهی ها در تیمار واکسینه در ابتدا به روش داخل صفاقی با واکسن غیرفعال شده با فرمالین ایمن شدند و 30 روز بعد واکسن یادآور بهروش غوطه وری انجام شد. گروه شاهد کاملاً مشابه تیمار شاهد با سرم فیزیولوژی تیمار شد. در روزهای 0، 15، 30، 45 و 60 روز بعد از تزریق اولیه نمونه های خون و کلیه قدامی از ماهی ها تهیه و شاخص های خون شناسی (هماتوکریت، هموگلوبین و شمارش تام گلبول های سفید و قرمز خون) و برخی شاخص های ایمنی شامل: فعالیت لایزوزیم سرم، فعالیت کمپلمان و قدرت باکتری کشی سرم و قدرت بیگانه خواری لکوسیت های کلیه قدامی بررسی گردید. نتایج نشان داد که در بین شاخص های خونی هرچند تعداد گلبول های سفید خونی در تیمار ایمن شده افزایش معنی داری داشت (0/05>p) ولی سایر شاخص های خونی تحت تاثیر واکسیناسیون قرار نگرفت (0/05<p). در بین شاخص های ایمنی، افزایش معنی دار در فعالیت لایزوزیم و کمپلمان سرم، قدرت باکتری کشی سرم و قدرت بیگانه خواری لکوسیت های کلیه قدامی نسبت به گروه شاهد در اکثر مراحل نمونه گیری مشاهده گردید (0/05>p). لذا می توان نتیجه گرفت واکسیناسیون ماهی قزل آلا با واکسن دوگانه استرپتوکوکوزیس/لاکتوکوکوزیس به روش تزریقی و غوطه وری ایمنی زایی مناسبی داشته و برای واکسیناسیون ماهی قزل آلا مناسب می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_63249_891573fc4443bfdf6642390cb4fa7594.pdf
2017-12-22
199
206
واکسن دوگانه
استرپتوکوکوزیس
ایمنی زایی
قزل آلای رنگین کمان
اسعماعیل
کرمی
karami78@gmail.com
1
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز
AUTHOR
مجتبی
علیشاهی
alishahimoj@gmail.com
2
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز
LEAD_AUTHOR
محمد رضا
تابنده
tabandeh.a@scu.ac.ir
3
گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز
AUTHOR
مسعود
قربانپور
ghorbanpour.m@scu.ac.ir
4
گروه پاتوبیولوژی ، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز
AUTHOR
تکاور
محمدیان
takavarmohamadian@scu.ac.ir
5
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز
AUTHOR
علیشاهی، م.؛ سعیدی منش، م.؛ مصباح، م. و زارعی، م.، 1395. بررسی اثر نانوکیتوزان بر ایمنی زایی واکسن خوراکی آئروموناس هیدروفیلا در ماهی کپور معمولی. مجله دامپزشکی ایران. سال 12، شماره 1، صفحه 53 تا 65.
1
سلطانی، م.؛ علیشاهی، م.؛ خضرائی نیا، پ.؛ ربانی م. و ستاری، ا.، 1386. مطالعه برخی پاسخ های ایمنی ماهی قزل آلای رنگین کمان به برخی آنتی ژن های استرپتوکوس اینیه. مجله تحقیقات دامپزشکی. دوره 62 ، شماره 1، صفحات 23 تا 38.
2
قیاسی،م.؛ زاهدی،آ.وخوشباوررستمی،ح،. 1379. بروز اپیدمی استرپتوکوکوزیس در ماهیان قزل آلای رنگین کمان در استان مازندران. اولین همایش بهداشت و بیماری های آبزیان ایران، اهواز. صفحه 59.
3
Alishahi, M.; Esmaeili Rad, A.; Zarei, M. andGhorbanpour, M., 2014. Effect of dietary chitosan on immune response and disease resistance of Cyprinus carpio. Iranian Journal of Veterinary Medicine. Vol. 8, No. 2, pp: 125-133.
4
Alishahi, M.; Ranjbar, M.M.; Ghorbanpour, M.; Peyghan, R.; Mesbah, M. and Razijalali, M., 2010. Effects of dietary Aloe vera on specific and nonspecific immunity of Common carp (Cyprinuscarpio). Journal of Veterinary Researches. Vol. 4, No. 3, pp: 85-91.
5
Anderson, D.P. and Jeney, G., 1991. Responses to in vitroand in vivoimmunizations with Aeromonas salmonicida O antigen bacterins in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish and Shellfish Immunology.Vol. 1, pp: 251-260.
6
Andrew, C.; céline, G.; bjarne, G.; Hansen, M.; Horne, A. and Ellis, E., 2002. Antibody increases phagocytosis and killing of Lactococcus garvieae by rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, L.) macrophages Fish & Shellfish Immunology.Vol. 12, pp: 181-186.
7
Barta, O., 1993. Veterinary clinical immunology laboratory. Bar-Lab Inc. 350 P.
8
Bercovier, H.; Ghittino, C. and Eldar, A., 1997. Immunization with bacterial antigens: Infections with streptococci and related organisms. In, Gudding R, Lillehaugh A, Midtlyng PJ, Brown F (Eds): Fish Vaccinology. SW. 160 P.
9
Brown, L.L.; Iwama, G.K. and Evelyn, T.P.T., 1996. The effects of early exposure of Coho salmon (Oncorhynchus kisutch) eggs to the p57 protein of Renibacterium salmoninarum on the development of immunity to the pathogen. Fish and Shellfish Immuno. Vol. 6, pp: 149-165.
10
Chen, X.; Wu, Z. And Yin, J., 2003. Effects of four species of herbs on immune function of Carassius auratus gibelio. J Fish Sci China. Vol.10, pp: 36-40.
11
Choi, S.H.; Park, K.H.; Yoon, T.J.; Kim, J.B.; Jang, Y.S. and Choe, C.H., 2008. Dietary Koren mistletoe enhances cellular non- specific immune responses and survival of Japanese eel (Anguilla japonica). Fish Shellfish Immunol. Vol. 24, pp: 67-73.
12
Ellis, A.E., 1990. Lysozyme assays. In: Stolen JS, Fletcher TC, Anderson DP, Roberson BS, van Muiswinkel WB, editors. Techniques in fish immunology, Fair Haven NJ: SOS Publications. pp: 101-103.
13
Faghani, T.; Azari Takami, Gh.; Kousha, A. and Faghani, S., 2008. Survening on Alginic acid and anti-streptococcus vaccine effect on the growth performance, survival rate, hematological parameters in rainbow trout (Oncorhynchous mykiss). World Journal of Zoology. Vol. 3, No. 2, pp: 54-58.
14
Feldman, B.F.; Zinkl, J.G. and Jain, N.C., 2000. Schalm's Veterinary Hematology. 5th ed. Lippincott Williams & Wilkins. Vol. 1124, pp: 67-73.
15
Figueras, A.; Santarém, M.M. and Novoa,B., 1997. Phagocytic activity of turbot (Scophthalmus maximus) leucocytes: opsonic effect of antibody and complementFishandShellfishImmunology. Vol. 7, pp: 621-624.
16
Huang, H.Y.; Chen, Y.C.; Wang, P.C.; Tsai, M.A.; Yeh, S.C.; Liang, H.J. and Chen, S.C., 2014. Efficacy of a formalin-inactivated vaccine against Streptococcus iniae infection in the farmed grouper Epinephelus coioides by intraperitoneal immunization. Vaccine. Vol. 5, No. 32, pp: 7014-7020.
17
Li, J.; Siyuan, M.; Norman, Y. and Woo, S., 2016.Vaccination of Silver Sea Bream (Sparus sarba) against Vibrio alginolyticus: Protective Evaluation of Different Vaccinating Modalities Int. J. Mol. Sci. Vol. 17, No. 40, pp: 33-40.
18
MacArthur, J.I.; Fletcher, T.C.; Pirie, B.; Davidison, R.J.L. and Thompson,A.W., 1984. Peritonea1 inflammatory cells in plaice, Pleuronectes platessa L.: effects of stress and endotoxin. J Fish Biol. Vol. 25, pp: 69-81.
19
Mcnulty, T.S.; Klesius, P. and Shoemaker, C., 2003. Hematological Changes in Nile Tilapia (Oreochromis niloticus) Infected with Streptococcus iniae by Nare Inoculation. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 34, No.3, pp: 418-422.
20
Pridgeon, J.W. and Klesius, P.H., 2011. Development and efficacy of a novobiocin-resistant Streptococcus iniae as a novel vaccine in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Vaccine. Vol. 29, pp: 5986-5993.
21
Romalde, J.L.; Luzardo-Alvarez,A.; Ravelo, C.; Toranzo, AE. and Blanco-Mendez, J., 2004. Oral immunization using alginate micro-particles as a useful strategy for booster vaccination against fish lactococcosis. Aquaculture. Vol. 236, pp: 119-129.
22
Sakai, D.K., 1984. Opsonization by fish antibody and complement in the immune phagocytosis by peritoneal exudate cells isolated from salmonid fishes. Journal of FishDiseases. Vol.7, pp: 29-38.
23
Santarém, M.M. and Figueras, A., 1994. Kinetics of phagocytic activity, plaque-forming cells and specific agglutinins of turbot (Scophthalmus maximus L.) immunized with O-antigen of Vibrio damsela and Pasteurella piscicida. Fishand Shellfish Immunology.Vol. 4, pp: 527-537.
24
Santarém, M.M. and Figueras, A., 1995. Leucocyte numbers and phagocytic activity in turbot Scophthalmus maximus following immunization with Vibrio damsela and Pasteurella piscicida 0-antigen bacterins diseases of aquatic organisms. Vol. 23, pp: 213-220.
25
Secombes, C.J., 1990. Isolation of salmonid macrophages and analysis of their killing activity. In Techniques in Fish Immunology (J. S. Stolen, T. C. Fletcher, D. P. Anderson, B. S. Robertson & W. B. Muiswinkel, eds) U.S.A. 154 P.
26
Soltani, M.; Pirali Kheirabadi, E.; Taheri Mirghaed, A.; Zargar, A.; Mohamadian, S.; Roohollahi, Sh. and Zakian, M., 2015.Study on Streptococcosis and Lactococcosis Outbreaks in Rainbow Trout Farms in Fars and Lorestan Provinces. JofVeterinaryMicrobiology. Vol. 30, pp: 49-58.
27
Soltani, M.; Alishahi, M.; Mirzargar, S. and Nikbakht, G., 2007. Vaccination of rainbow trout against Streptococcus iniae infection: comparison of different routes of administration and different vaccines. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 7, No. 1, pp: 129-140.
28
Soltani, M.; Jamshidi, Sh. and Sharifpour, I., 2005. Streptococcosis caused by Streptococcus iniae in farmed rainbow trout (O. mykiss) in Iran: biophysical characteristics and pathogensis. Bulletin of European Association of Fish Pathologists. Vol. 25, pp: 95-107.
29
Soltani, M.; Pirali Kheirabadi, E.; Taheri, M.A.; Zargar, A.; Mohamadian, S.; Roohollahi, Sh. and Zakian, M., 2015.Study on Streptococcosis and Lactococcosis Outbreaks in Rainbow Trout Farms in Fars and Lorestan Provinces. JofVeterinaryMicrobiology. Vo. 30, pp: 49-58.
30
Suzukl, Y. and Hibiya, T., 1986. Dynamics of leucocytic inflammatory responses in carp. Fish Path. Vol. 23, pp: 179-184.
31
Thrall, M.A.; Baker, D.C. and Lassen, ED., 2004. Veterinary Hematology and Clinical Chemistry: Text and Clinical Case Presentations Set. John Wiley & Sons. UK, London. pp: 241-402.
32
Vendrell, D.; Balcazar, J.L.; Ruiz-Zarzuela, I.; Ignacio, d.B.; Girones, O. and Muzquiz, JL., 2006. Lactococcus garvieae in fish: Review. Comparative Immunol Microbiol Infectious Dis. Vol. 29, pp:177-198.
33
Wang, E.; Wang, J.; Long, B.; Kaiyu, W.; Yang H.; Qian.; Huang, H.; Ouyang, P. and Lai, H., 2016. Molecular cloning, expression and the adjuvant effects of interleukin-8 of channel catfish (Ictalurus Punctatus) against Streptococcus iniae. Sci. Rep. Vol. 6, 29310 p.
34
ORIGINAL_ARTICLE
اثر پری بیوتیک سلماناکس بر پارامترهای خون بچه ماهی کپورمعمولی (1758Cyprinus carpio L. Linnaeus, ) در برابر تنش حمل و نقل
یکی از مهم ترین فاکتورها در زمان حمل و نقل، کاهش میزان استرس می باشد. تأثیرات پریبیوتیک تجاری مخمرمایع سلماناکس بر روی پارامترهای بیوشیمیایی و فاکتورهای خونی ماهی کپورمعمولی جوان (Cyprinus carpio) در طول حمل و نقل 12ساعته مورد بررسی قرار گرفت. 150قطعه ماهی کپورمعمولی با وزن متوسط 1/50±60/50 گرم توسط رژیم غذایی پریبیوتیک سلماناکس در سطح 1 میلی لیتر در هر 1کیلوگرم غذا در طول 90 روز تغذیه شدند. ماهیان در 3 تیمار و هریک با 3 تکرار با تراکم 1کیلوگرم به کیسه های پلاستیکی 40 لیتری ذخیره سازی شدند. تیمارها به ترتیب (A (25)، B (18 و (C (10 درجه سانتی گراد بود. 10ماهی از کیسه های پلاستیکی انتخاب و در آغاز و پایان آزمایش خونگیری شد. تغییرات دمای آب در زمان حمل و نقل تأثیر معنی داری بر میزان هماتوکریت وMCV در بین تیمارهای آزمایشی با گروه شاهد نداشت (0/05>p) در میزان گلوکز و کلسیم نیز در بین تیمارهای آزمایشی، اختلاف قابل توجهی با گروه شاهد نداشت (0/05<p) بیش ترین میزان کورتیزول در تیمار شاهد مشاهده شد (0/05>p). حداکثر AST (واحد بین المللی بر لیتر) 361/50 در تیمار C مشاهده گردید (0/05>p). نتایج مطالعه حاضر نشان داد استفاده از پریبیوتیک سلماناکس در حمل و نقل طولانی مدت (12ساعته) منجر به کاهش استرس در ماهی کپورمعمولی می شود.
http://www.aejournal.ir/article_63369_74dc56facf7e0ede991791885e1350cf.pdf
2017-12-22
207
214
مخمرمایع سلماناکس
پارامترهای خونی
حمل و نقل
کپور معمولی
مهین
رنجدوست
mahin.rnj@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، صندوق پستی: 4971799151
LEAD_AUTHOR
حجت الله
جعفریان
hojat.jafaryan@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، صندوق پستی: 4971799151
AUTHOR
محمد
هرسیج
m_harsij80@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، صندوق پستی: 4971799151
AUTHOR
حسنا
قلی پور کنعانی
gholipourk@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، صندوق پستی: 4971799151
AUTHOR
احسانی کناری، ج.؛ اسماعیلیفریدونی، ا. و فرخروزلاشیدانی، م.، 1394. بررسی اثرات حمل و نقل بر برخی از پارامترهای استرس، هورمون های استروئیدی و فاکتورهای خونی در مولدین کپور معمولی (Cyprinus carpio). مجله زیست شناسی جانوری تجربی. سال 4، شماره 1، پیاپی 13، صفحات 53 تا 65.
1
حافظ امینی،پ.وعریان،ش.، 1381 .بررسی اثرات ناشی از استرس کلریدسدیم روی هماتوکریت و هموگلوبین خون درکپورمعمولی. مجله علمی شیلات ایران. شماره3، سال 11، صفحات 13 تا 22.
2
غیاثی، ف.؛ میرزرگر، س.س.؛ سالارآملی، ج.؛ باهنر، ع. و ابراهیم زاده موسوی، ح.ع.، 1389. مطالعه پارامترهای خونی و بیوشیمی سرمی کپور معمولی (Cyprinus carpio) متعاقب مواجهه با غلظت کم کادمیوم. مجله تحقیقات دامپزشکی دانشگاه تهران. شماره 65، صفحات 61 تا 66.
3
Adel, M.; Safari, R.; Yeganeh, S.; Ahmadvand, S. and Ahmadvand, S., 2015. Effect of a dietary prebiotic (GroBiotic®-A) on growth performance, hematological, biochemical and immunological parameters of juvenile beluga (Huso huso). Research Journal. Vol. 4, pp: 89-100.
4
Ahmadifar, E.; Akrami, R.; Ghelichi, A. and Mohammadi Zarejabad, A., 2011. Effects of different dietary prebiotic inulin levels on blood serum enzyme, hematologic and biochemical parameters of great sturgeon (Huso huso) juvenile. Comparative Clinical Pathology. Vol. 20, pp: 447-451.
5
Alishahi, M.; Ranjbar, M.M.; Ghorbanpour, M.; Peyghan, R.; Mesbah, M. and Razi jalali, M., 2010. Effects of dietary Aloe vera on specific and nonspecific immunity of Common carp (Cyprinus carpio). International Journal of Veterinary Research. Vol. 4, pp: 189-195.
6
Akrami, R., 2008. Effect of dietary inulin prebiotic of growth, survival and intestinal bacterial density of juvenile great sturgeon (Huso huso), Thesis for Ph. D. of Tehran Research Branch, Islamic Azad University. 100 p.
7
Andrews, S.R.; Sahu, N.P.; Pal, A.K. and Kumar, S., 2009. Haematological modulation and growth of Labeo rohita fingerlings: effect of dietary mannan oligosaccharide, yeast extract, protein hydrolysate and chlorella. Aquaculture Research. Vol. 41, pp: 61-69.
8
Asahina, K.; Kanbegawa, A. andHigashi, T., 1995. Development of a microtiter plate enzyme-linked immunosorbent assay for 17a, 20h-21-trihydroxy-4-pregnen l-one, a teleost gonadal steroid. Fisheries Sciences. Vol. 61, pp: 491- 494.
9
Barton, B. A.; Peter, R.E. and Paulencu, C.R., 1980. Plasma cortisol levels of fingerling rainbow trout (Salmo gairdneri) at rest, and subjected to handling confinement, transport and stocking. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 37, pp: 805-811.
10
Benfey, T.C. and Biron, M., 2000. Acute stress response in triploid rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and brook trout (Salvelinus fontinalis). Aquaculture. Vol. 184, pp: 167-176.
11
Bernet, D.; Schmidt, H.; Wahli, T. and Burkhardt-Holm, P., 2001. Effluent from a sewage treatment works causes changes in serum chemistry of brown trout (Salmo trutta). Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 48, pp: 140-147.
12
Blasko, L.; Fernadez, J. and Gutierrez, J., 1992. Variations in tissue reserves, plasma metabolites and pancreatic hormones during fasting in immature carp (Cyprinus carpio). Comp. Biochemical and Physiology. Vol. 103, pp: 357-363.
13
Belanger, J.M.; Son, J.H.; Laugero, K.D.; Moberg, C.P.; Doroshov, I.; Lankford, S.E. and Cech, J.J., 2001. Effects of short term management stress and ACTH injectionon plasma cortisol levels in cultured white sturgeon, Acipenser transmontanus. Aquaculture. Vol. 203, pp: 165-176.
14
Dacie, S. and Lewis, S. 1991. Practical Haematology. Edn7, Churchill Livingstone, London.
15
Dobsikova, R.; Svobodova, Z.; Blahova, J.; Modra, H. and Velisek, J., 2006. Acta Vet. Brno. Vol. 75, pp: 437-448.
16
Dobsikova, R.; Svobodova, Z.; Blahova, J.; Modra, H. and Velisek, J., 2009. The effect of transport on biochemical and haematological indices of common carp (Cyprinus carpio) Czech J. Animal Sciences. Vol. 54, pp:510-518.
17
David, M.; Shivakumar, R.; Mushigeri, S.B. and Kuri, R.C., 2005. Blood glucose and glycogenlevels as indicators of stress in thefreshwater fish, Labeo rohita,under fenvalerate intoxication.Journal of Ecotoxicology and Environmental Monitoring. Vol. 15, pp: 1-6.
18
Davison, W.; Frsnklin, E.C. and Mckenzie, B., 1994. Haematological changes in an Antarctic teleost, Trematomus bernacchii, following stress. Polar Bio. Vol. 14, pp: 463-466.
19
Gatica, M.C.; Monti, G.E.; Krowles, T.G.; Warriss P.D. and Gallo, C.B., 2010. Effects of commercial live transportation and preslaughter handling of Atlantic salmon on blood constituents, Archivos the Medicina Veterinaria. Vol. 42, pp: 73-78.
20
Gang, L. and Huang, G.L., 2008. Extraction of Two Active Polysaccharides from the Yeast Cell Wall. Z. Naturforsch. Vol. 63, pp: 919-921.
21
Gatlin, D.M. III and Li, P., 2004. Dietary supplementation of prebiotics for haelth management of hybrid stripped bass morone chrysops × M. saxatilis. Aqua Feeds Formul Beyond. Vol. 1, No. 4, pp: 19-21.
22
Gibson,G.R.andRoberfroid,M.B.,1995. Dietary modulation of the colonic microbiota: introducing the concept of prebiotics, Journal of Nutrition. Vol. 125, pp: 1401-1412.
23
Gultepe, N.; Salnur, S.; Hossu, B. and Hisar, O., 2010. Dietary supplementation with Mannan oligosaccharides (MOS) from Bio-Mos enhances growth parameters and digestive capacity of gilthead sea bream (Sparus aurata). Aquaculture Nutrition. Vol. 17, pp: 482-487.
24
Goos, H.J.T. and Consten, D., 2002. Stress adaptation, cortisol and pubertal development in the male common carp Cyprinus carpio. Molecular and Cellular Endocrinology. Vol. 197, pp: 105-116.
25
Hanaee Kashani, Z.; Imanpoor, M.R.; Shabani, A. and Gorgin, S., 2012. Effect of dietary vitamin C and highly unsaturated fatty acids on some biochemical blood parameters in goldfish (Carassius auratus gibelio). World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 4, pp: 454-457.
26
Hoseinifar, S.H.; Mirvaghefi, A.R.; Mojazi Amiri, B.; Khoshbavar Rostami, H.A.; Pooramini, M.; and Bastami, D., 2011. The probiotic effect of dietary inactive yeast Saccharomyces cerevisiae var ellipsoideus on growth factors, survival, body composition and intestinal microbiota of Beluga juvenile (Huso huso). K-Iranian Scientific Fisheries Journal. Vol. 19, No. 4, pp: 55-66.
27
Iri, Y.; Khoshbavar, H.A. and Rostami Akrami, R., 2012. Effect of dietary Fructooligosaccharide as a prebiotic on the growth and density of Lactobacillus in intestine of stellate (Acipenser stellatus) fingerling. Fisheri science and technology Scientific Research Journal. Vol. 1, pp: 1-11.
28
Iversen, M.; Finstad, B. and McKinley, E.R., 2003. The efficacy of metomidate, clove oil, aqui-s and benzoak anestheticsin Atlantic salmon (Salmo salar L.) smolts, and their potential stress-reducing capacity.Aquaculture. Vol. 221, pp: 549-566.
29
Jiang, I.F.; Kumar, V.B.; Lee, D.N. and Weng, C.F., 2008. Acute osmotic stress affects Tilapia (Oreochromismossambicus) innate immune responses. Fish and Shellfish Immunol. Vol. 25, pp: 841-846.
30
Khanna, S.S. and Singh, T., 1971. Studies on the blood glucose level in Channa punctatus. Acta Zoologica. Vol. 52, pp: 97-101.
31
Kavitha, C.; Malarvizhi, A.; Kumaran, S.S. and Ramesh, M., 2010. Toxicological effects ofarsenate exposure onhematological, biochemical andliver transaminases activity in an Indian major carp, Catla catla. Food and Chemical Toxicology. Vol. 48, pp: 2848-2854.
32
Kitao, T. and Yoshida, T., 1986. Effect of an immunopotentiator on Aeromonas salmonicida infection in rainbow trout. Vet. Immunol. Immunopathol. Vol. 12, pp: 287-291.
33
Khormali, M. 2015. hematological changes of juvenile Common carp (Cyprinus carpio Linnaeus, 1758) with different condition of water temperature and water salinity during transportation in plastic bags. Master of Science, The University of Gonbad Kavoos. 65 p.
34
Laiz-Carrion, R.; Sangiao-Alvarellos, S.; Guzman, J.M.; Martin del Rio, M.P.; Miguez, J.M., Soengas, J.L. and Mancera, J.M., 2003. Energy metabolism in fish tissues related to osmoregulation and cortisol action. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 27, pp: 179-188.
35
Li, P. and Gatlin, D.M., 2004. Dietary brewers yeast and the prebiotic GrobioticTM AE in fluence growth performance, immune responses and resistance of hybrid striped bass (Morone chrysops × M. saxatilis) to Streptococcus iniae infection. Aquaculture. Vol. 231, pp: 445-456.
36
Lim, C.; Yildirim-Aksoy, M. and Welker, T., 2005. Effect of feeding duration of sodium chloride containing diets on growth performance and some osmoregulatory parameters of nile tilapia (Oreochromis niloticus) after transfer to water of different salinities. In: burright, j., Flemming, C., Egna, H. (eds.). Twenty-Second Annual Technical Report. Aquaculture CRSP, Oregon State University, Corvallis, Oregon. pp: 411-420.
37
Milligan C.L. and Wood, C.M., 1982. Disturbances in haematology, fluid volume distribution and circulatory function associated with low environmental ph in the rainbow trout, Salmo gairdneri. The Journal of Experimental Biology. Vol. 99, pp: 397-415.
38
Morales, P.; Reyes, P.; Klawitter, V.; Huaiquin, P.; Bustamante, D.; Fiedler, J. and Herrera Marschitz, M., 2005. Effects of perinatal asphyxia on cell proliferation and neuronal phenotype eval-uated with organotypic hippocampal cultures. Neuroscience. Vol. 135, pp: 421-431.
39
Noga, E.J., 2010. Fish disease. Diaghosis and treatment. Ablock well pubishing company. pp: 37-40.
40
Olsen, R.E.; Sundell, K.; Hansen, T.; Hemre, G.I.; Myklebust, R.; Mayhew, T.M. and Ringø, E., 2003. Acute stress alters the intestinal lining of Atlantic salmon, Salmo salar: An electron microscopical study. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 26, pp: 211-221.
41
Pearson, M.P. and Stevens, E.D., 1991. Size and hematological impact of the splenic erythrocytereservoir in rainbow trout (Onchorynchus mykiss). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 9, pp: 39-50.
42
Pottinger, T.G., 1998. Changes in blood cortisol, glucose and lactate in carp retained in anglers’ keepnets. Journal of Fish Biology. Vol. 53, pp: 728-742.
43
Razeghi Mansour, M.; Akrami, R.; Ghobadi, S.H.; Amani Denji, K.; Ezatrahimi, N. and Gharaei, A., 2012. Effect of dietary mannan oligosaccharide on growth performance, survival, body composition, and some hematological parameters in giant sturgeon juvenile (Huso huso). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 38, pp: 829-835.
44
Riggs A., 1970. Properties of fish hemoglobins. In: Hoar W.S. and Randall D.J (eds). Fish Physiology. Vol 4. Academic Press, pp: 209-252.
45
Rottland, J. and Tort L., 1997. Cortisol and glucose responses after acute stress by net handling in the sparid red porgy previously subjected to crowing stress. The Journal of Fish Biology. Vol. 51, pp: 21-28.
46
Sang, H.M.; Trung, K.Y.L. and Fotedar, R., 2009. Dietary supplementation of mannan oligosaccharideimproves the immune responses and survival of marron, Cherax tenuimanus (Smith, 1912) when challenged with different stressors. Fish and Shellfish Immunol. Vol, 27, pp: 341-348.
47
Shahsavani, D.; Mohri, M. and Gholipour Kanani, H., 2010. Determination of normal values of some blood Serum enzymes in Acipenserstellatus Pallas. Fish Physiol Biochem. Vol. 36, pp: 39-43.
48
Staykov, Y.; Denev, S. and Spring, P., 2005. Influence of dietary mannan oligosaccharides (Bio-Mos) on growth rate and immune function of common carp (Cyprinus carpio L.). In: Howell, B., Flos, R. (Eds.), Lessons from the Past to Optimise the Future. Special Publication, No. 35. European Aquaculture Society. pp: 431-432.
49
Staykov, Y.; Spring, P.; Denev, S. and Sweetman, J. 2007. Effect of a mannan oligosaccharide on the growth performance and immune status of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquac. Int. Vol. 15, pp: 153-161.
50
Svobodova, Z.; Kalab, B.; Dusek, L.; Vykusova, B.; Kolarova, J. and Janouskova, D., 1999. The effect of handling and transport on the concentration of glucose and cortisol in blood plasma of common carp. Acta Vet Brno. Vol. 68, pp: 265-274.
51
Svobodova Z.; Vykusova, B. and Machova J., 1994: The effect of pollutants on selected haematological and biochemical parameters in fish. In: Muller R., Lloyd R. (eds.): Sublethal and Chronic Effects of Pollutants on Freshwater Fish. FAO Fishing News Books, Cambridge, UK. pp: 39-52.
52
Tangestani, R.; Alizadeh Doughikollaee, E.; Ebrahimi, E. and Zare, P., 2011. Effects of Garlic essential oils an Immunostimulant on Hematological indices of juvenile beluga (Huso huso). J of Veteri Rese. Vol. 66, pp: 209-216.
53
Taoka, Y.; Maeda, H.; Jo, J.Y.; Jeon, M. J.; Bai, S.C.; Lee, W.J.; Yuge, K. and Oshio, D.S., 2006. Growth, strees tolerance and non-specific immune response of Japanese flounder Paralichthysolivaceustoprobiotics in a closed recirculation system.Fish.Sci. Vol. 72, pp: 310-321.
54
Taylor, A.L. and Solomon, H., 1979. Critical factor in transport of living freshwater fish-1, General considerations and atmospheric gases Fish Management. Vol. 10, pp: 27-32.
55
Torrecillas, S.; Makol, A.; Caballero, M.J.; Montero, D.; Dhanasiri, A.K.S.; Sweetman, J. and Izquierdo, M.S., 2012. Effects onmortality and stress response in European sea bass, Dicentrarchus labrax (L.), fed mannanoligosaccharides (MOS) after Vibrio anguillarum exposure. Journal of Fish Diseases. Vol. 35, No. 8, pp: 591-602.
56
Torrecillas, S.; Makol, A.; Caballero, M. J.; Montero, D.; Robaina, L.; Real, F.; Sweetman, J.; Tort, L. and Izquierdo, M.S., 2007. Immune stimulation and improved infection resistance in European sea bass (Dicentrarchus labrax) fed mannan oligosaccharides. Fish and Shellfish Immunol. Vol. 23, pp: 969-981.
57
Tort, L., 2011. Stress and immune modulation in fish. Dev Comp Immunol. Vol. 35, pp: 1366-1375.
58
Trinder, P., 1969. A colorimetric method for the determination of glucose. Annlin Biochem. Vol. 6, pp: 24-26.
59
Urbinati, E.C.; De Abreu, J.S.; Da Silva Camargo, A.C. and Landinez Parra, M.A., 2004. Loading and transport stress of juvenile matrinxa (Brycon cephalus, Characidae) at various densities. Aquaculture. Vol. 229, pp: 389-400.
60
Varsamos, S.; Nebel, C. and Charmantier, G., 2005. Ontogeny of osmoregulationin fish: A Comparative review. Biochemical and Physiology. Vol. 141, pp: 401-429.
61
Veerasamy, R.; Min, L.S.; Paulin, R.; Sivadasan, S.; Varghese, C.; Rajak, H. and Marimuthu, K., 2014. Effect of aqueous extract of Polygonum minus leaf on the immunity and survival of African catfish (Clarias gariepinus). Journal of Coastal Life Medicine. Vol. 2, pp: 209-213.
62
Williams, R.W. and Warner, M.C., 1976. Some observation on the stained bloodcellular elements of Ictalurus pun ctatus. J. Fish. Biol. Vol. 9, pp: 491-497.
63
Yousefian, M.; Hedayatifard, M.; Fahimi, Sh.; Shikholeslami, M.; Irani, M.; Amirinia, C. and Mousavi, S.E., 2012. Effect of prebiotic supplementation on growth performance and serum biochemical parameters of Kutum (Rutilus frisii kutum) fries. Asian Journal of Animal and Veterinary Advances. Vol. 7, pp: 684-692.
64
Zabelinskii, S.A.; Chebotareva, M.A.; Shukolyukova, E.N.; Emel’yanova, L.V.; Savina, M.V.; Belostotskaya, G.B., 2006. Comparative Study of Lipids and Fatty Acids in Blood Plasma of River Lamprey Lampetra fluviatilis and Brown Rana temporaria at the periods of elimination of exogenous feeding. J. Evol. Biochem. Physiol. Vol. 42,pp: 376-382.
65
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی شاخصهای خونشناسی ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) در مواجهه با نانوذرات آهن و پروبیوتیک لاکتوباسیلوس
تحقیق حاضر جهت ارزیابی شاخصهای خونشناسی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) در مواجهه با نانوذرات آهن و پروبیوتیک لاکتوباسیلوس صورت گرفت. تعداد250بچه ماهیکپورمعمولی به مدت 42 روز در سه دسته ماهیان بدون پروبیوتیک و ماهیان دارای پروبیوتیک سطح (A (106 و ماهیان دارای پروبیوتیک سطح (107) B تقسیم شدند. سپس هرکدام از گروهها 50 درصد غلظت کشنده نانو آهنبه مدت ده روز اضافه شد. تعداد گلبولهای قرمز و همچنین میزان M.C.H و M.C.H.C هموگلوبین خون اختلاف معنی داری با گروه شاهد داشت (05 /0>P)، به طوری که آهن باعث افزایش این شاخص ها و پروبیوتیک منجر به کاهش شاخصهای مذکور گردیده است، ولی هماتوکریت در حضور پروبیوتیک و آهن کاهش معنی داری یافت (0/05>P). مقدار M.C.V در مواجهه با آهن کاهش یافت درحالی که پروبیوتیکروند افزایشی M.C.V را به دنبال داشت. نتایج حاکی از تاثیر پروبیوتیک بر کاهش لنفوسیت خونبود درحالی که آهن منجر به افزایش این میزان گردید. تیمارها بر شاخصائوزینوفیل خون تاثیر معنی داری نداشت (0/05<P). ولی نتایج حاکی از تاثیر پروبیوتیک و آهن بر افزایش مونوسیت خون بود (0/05>P). نتیجه گیری کلی نشان داد که پروبیوتیک اثر کاهشی بسیاری از شاخص های خون شناسی داشته ولی در مقابل، آهن اثر افزایشی بر این شاخص ها داشت و در صورت ترکیب آهن و پروبیوتیک، اثر کاهشی این شاخص ها به وسیله پروبیوتیک جبران و یا حتی افزایش یافت که نشان از تاثیر مطلوب پروبیوتیک بر تعدیل اثرات نامطلوب نانوذرات آهن می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_63372_621e3fed6e818b0ab1d8aa9190268632.pdf
2017-12-22
215
222
کپورمعمولی
خون شناسی
نانو ذرات فلزی
پروبیوتیک
روح ا..
شیخ ویسی
roholla_veisi@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
سید علی اکبر
هدایتی
hedayati@gau.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
طاهره
باقری
bagheri1360@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، صندوق پستی: 4971799151
AUTHOR
علی
جافرنوده
a.jafar55@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
آذری تاکامی، ق.؛ حقیقی، ع.و بهمنش، ش.، 1390. بررسی مقاومت ماهی قزل آلای رنگین کمان تغذیه شده با مقادیر مختلف باکتوسل در مواجهه با بیماری استرپتوکوکوزیس، انتشارات سازمان دامپزشکی کشور.
1
فرحبخش، ا.؛ نعیمی، ا.؛ موحدی، ع.؛ احرار، ا.؛ مظفری، م.و صحتی، ن.، 1385. مقدمه ای بر نانو تکنولوژی. 503 صفحه.
2
ناصری، س.؛ نظامی، ش.؛خارا، ح.؛ فروزانفر، ع.و شکوری، ه.، 1387. تاثیر سطوح مختلف پروبیوتیک و آهن بر برخی فاکتورهای خونی آلوین قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss ). مجله علوم زیستی واحد لاهیجان. شماره 2، صفحات 73 تا 81.
3
هدایتی،ع.؛قربانی،ر.؛باقری، ط.؛ احمدوند، ش.و جهانبخشی، ع.، 1392. بررسی اثرات سمیت کشنده نانواکسیدروی (ZnO NPs)، نانواکسیدمس ،( CuONPs )و نانو دی اکسیدتیتانیوم (TiO2 NPs )و بررسی اثرات سمیت تحت کشنده آن ها بر فاکتورهای خون و بافت آبشش ماهی قرمز،کپور معمولی و کلمه. طرح پژوهشی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 29 صفحه.
4
هدایتی، ع.؛ جهانبخشی، ع. و قادری رمازی، ف.، 1392. سم شناسی آبزیان. جلد اول، چاپ اول. صفحات 70 تا 76.
5
Adams, S.M., 2002. Biological indicators of aquatic ecosystem stress. American Fisheries Society and Ramya, V.I.2011. Nanotechnology: A Novel Tool for Aquaculture. Aquaculture Journal. Vol. 16, pp: 1-5.
6
Behara, T.; Swain, P.; Rangachrulu, P.V. and Samanta, M., 2013. Nano-Fe as feed additive improves the hematological and immunological parameters of fish, Labeo rohita H. J. Applied Nanoscience. Vol. 13, pp: 251-258.
7
Billard, R.; Cosson, J.; Perchec, G. and Linhart, O., 1995. Biology of sperm and artificial reproduction in carp. Aquaculture. Vol. 129, No. 1, pp: 95-112.
8
Cheraghi, A.; Bohrani, N. and Malekfar, R., 2004. Technology office of the presidential committee on nanotechnology policy. Applications of Nanotechnology in the Diagnosis and Treatment of Diseases. Vol. 5, pp: 85-94.
9
Di Giulio, R.T. and Hinton, D.E., 2008. The Toxicology of Fishes. Taylor Francis. 319-884.dietary inulin and oligo saccharides as prebiotics for weaning Turbot (Psetta maxima). Aquaculture International. Vol. 14, pp: 219-229.
10
Evans, G.O., 2008. Animal hematotoxicology: a practical guide for toxicologists and biomedical researchers. CRC Press.
11
Ferguson, R.M.W.; Merrifield, D.L.; Harper, G.M.; Rawling, M.D.; Mustafa, S.; Picchietti, S.; Blacazar, J.L., S. J.L. and Davies, S.J., 2010. The effect of Pediococcus acidilactici on the gut microbiota and immune status of ongrowing red tilapia (Oreochromis niloticus). Jour. App. Microbio. Vol. 109, No. 3, pp: 851-862.
12
Fiess, J.C.; Kunkel-Patterson, A.; Mathias, L.; Riley, L.G.; Yancey, P.H.; Hirano, T. and Grau, E.G., 2007. Effects of environmental salinity and temperature on osmoregulatory ability, organic osmolytes, and plasma hormone profiles in the Mozambiquetilapia (Oreochromis mossambicus). Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 146, No. A, pp: 252-264.
13
Firdaus, S.; Jafri, A.K. and Rahman, N., 1994. Effects of iron-deficient diet on the growth and haematological characteristics of the catfish Heteropueustes fossilis Bloch. Journal of Aquaculture in the Tropics. Vol. 9, pp: 179-185.
14
Fuller, R., 1989. A review: probiotics in man and animals. J Appl Bacteriol. Vol. 66, pp: 365-378.
15
Gibson, G.R. and Roberfroid, M.B., 1995. Dietary modulation of the human colonic microbiota: Introducing the concept of prebiotics. Journal of Nutrition. Vol. 125, pp: 1401-1412.
16
Gisbert, E.; Rodriguez, A.; Cardona, L.; Huertas, M.; Gallardo, M.A.; Sarasquete, C.; Sala-Rabanal, M.; Ibarz, A.; Sanchez, J. and Castello-Orvay, F., 2004. Recovery of Siberian sturgeon yearlings after an acute exposure to environmental nitrite: changes in the plasmatic ionic balance, Na+/K+ATPase activity, and gill histology. Aquaculture. Vol. 239, pp: 141-154.
17
Kolida, S.; Tuohy, K. and Gibson, G.R., 2002. Prebiotic effects of inulin and oligofructose. British Journal of Nutrition. Vol. 87, No. 2, pp: S193-S197.
18
Lee, K.M.; Kaneko, T.; Katoh, F. and Aida, K., 2006. Prolactin gene expression and gill chloride cell activity in fugu Takifugu rubripes exposed to a hypoosmotic environment. General and Comparative Endocrinology. Vol. 149, pp: 285-293.
19
Lim, C. and Klesius, P.H., 1997. Responses of channel catfish (Ictalurus punctatus) fed iron-deficient and replete diets to Edwardsiella ictaluri challenge. Aquaculture. Vol: 157, No: 1-2. pp: 83-93.
20
Lim, C.; Klesius, P.H.; Li, M.H. and Robinson, E.H., 2000. Interaction between dietary levels of iron and vitamin C on growth, hematology, immune response and resistance of channel catfish (Ictalurus punctatus) to Edwardsiella ictaluri challenge. Aquaculture. Vol. 185, pp: 313-327.
21
Mohan, B.R.; Kadirvel, S.K.; Natarajan, R. and Bhaskaran, M., 1996. Effect of probiotic supplementation on growth nitrogen utilization and serum cholestrol in broilers. British Poultry Science. Vol. 37, pp: 395-401.
22
Raida, M.K.; Larsen, J.L.; Nielsen, M.E. and Buchmann, K., 2003. Enhanced resistance of rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum), against Yersinia ruckeri challenge following oral administration of Bacillus subtilis and B. licheniformis (BioPlus2B). Journal of Fish Diseases. Vol. 26, pp: 495-498.
23
Ringo, E.; Olsen, R.E.; Dalmo, R.A.; Amlund, H.; Hemre, G. and Bakke, A. M., 2010. Prebiotics in aquaculture: a review. Aquaculture Nutrition. Vol. 16, pp: 117-136.
24
Savari, A.; Hedayati, A. and Safahieh, A., 2011. Characterization of blood cells and hematological parameters of yellowfin sea bream (Acanthopagrus latus) in some creeks of Persian Gulf. World J of Zool. Vol. 6, pp: 26-32.
25
Stoskopf, M.A., 1993. Fish medicine. Sounders Company, U.S.A. 882 p.
26
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی توالی کامل ژن هورمون رشد و آنالیز فیلوژنیک تاس ماهی استرلیاد (Acipenser ruthenus)
هورمون رشد یک پلیپپتید تک زنجیره ای است که رشد توده بدنی و متابولیسم را در مهره داران کنترل می کند. در این تحقیق ژن هورمون رشد تاس ماهی استرلیاد با استفاده از تکنیک cDNA از هیپوفیز جداسازی شد و توالی نوکلئوتیدی آن به دست آمد. برای این منظور ابتدا غده هیپوفیز از چهار نمونه تاس ماهی استرلیاد بالغ را جدا نموده و استخراج RNA با استفاده از محلول BIOZOL انجام شد. سپس با استفاده از تکنیک cDNA و PCR توالی ژن هورمون رشد تاس ماهی استرلیاد به دست آمد. نتایج نشان می دهد که ژن سنتزکننده هورمون رشد در تاس ماهی استرلیاد دارای توالی 768 نوکلئوتیدی می باشد که دارای bp 26 نوکلئوتید غیرترجمه ای در ناحیه ’’5 و bp 98 نوکلئوتید غیرترجمه ای در ناحیه ’’3 خود بوده و توالی کد شونده ای با bp 645 نوکلئوتید را دارد. هم چنین این ژن با کدون آغاز ATG در جایگاه 26 شروع و با کدون TAG در جایگاه 670 تمام می شود. ژن رشد تاس ماهی استرلیاد بالاترین میزان همولوژی با سایر مهره داران را ابتدا با پستانداران (67-64 درصد)، پس از آن با مارماهی شکلان، دوزیستان و سپس با سایر ماهیان استخوانی دارد. شباهت بالای توالی پروتئین ژن رشد تاس ماهی استرلیاد با دیگر گونه های پستاندار نشان می دهد که این ژن از یک ژن رشد اجدادی مشترک منشا می گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_63374_1b7ecf08c77cdd08ffe3f94b596d5053.pdf
2017-12-22
223
230
ژن هورمون رشد
cDNA
تاس ماهی استرلیاد (Acipenser ruthenus)
ماهان
سلمرودی
mahi_shark@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
علی
شعبانی
ali_shabany@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد
پورکاظمی
mohamad.pour@yahoo.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، صندوق پستی: 6116- 14155
AUTHOR
Ber, R. and Daniel, V., 1992. Structure and sequence of the growth hormone-encoding gene from Tilapia nilotica. Gene. Vol. 113, pp: 245-250.
1
Cao, H. and Zhou, L., 2011. Molecular biological study on hormones in Acipenseriformes. Hereditas (Beijing). Vol 33, pp: 707-712.
2
Cao, H.; Zhou, L.; Zhang, Y.Z.; Wei, Q.W.; Chen, X.H. and Gui, J.F., 2011. Molecular characterization of the growth hormone in Chinese sturgeon and its expression during embryogenesis and early larval stages. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 27, pp: 501-504.
3
Chang, Y.; Liu, C.; Huang, F. and Lo, T., 1992. The primary structures of growth hormones of three cyprinid species: Bighead carp, silver carp, and grass carp. Gen Comp Endocrinol. Vol. 87, pp: 385-393.
4
Chen, Y.; Wang, Y.; He, S. and Zhu, Z., 2003. Cloning and Sequencing of the Growth Hormone Gene of Large Yellow Croaker and Its Phylogenetic Significance. Biochemical Genetics. Vol. 42, pp: 365-375.
5
Funkenstein, B.; Chen, T.T.; Powers, D.A. and Cavari, B., 1991. Cloning and sequencing of the gilthead seabream (Sparus aurata) growth hormone-encoding cDNA. Gene. Vol. 103, pp: 243-247.
6
Gomez, J.M.; Loir, M. and Le Gac, F., 1998. Growth hormone receptors in testis and liver during the spermatogenetic cycle in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Biology of Reprodution. Vol. 58, pp: 483-491.
7
Kocour, M. and Kohlmann, K., 2011. Growth hormone gene polymorphisms in tench, Tinca tinca L. Aquaculture. Vol. 310, pp: 298-304.
8
Liu, H.; ZHANG, F.R.; YANG, D. and YU, L.N., 2009. Structure and Evolutionary Analysis ofA cipenser sinensis G row th H orm one cDNA Sequences. Journal of Hydroecology. Vol 2, p: 5.
9
Marins, L.F.; Levy, J.F.; Folch, J.M. and Sanchez, A., 2003. A growth hormone-based phylogenetic analysis of euteleostean fishes including a representative species of the Atheriniformes Order, Odontesthes argentinensis. Genetics and Molecular Biology. Vol. 26, No. 3, pp: 295-300.
10
McCormick, S.D., 2001. Endocrine control of osmoregulation in teleost fish. Am. Zool. Vol. 41, pp: 781-794.
11
Mahmoud, S.S.; Moloney, M.M. and Habibi, H.R., 1996. Cloning and sequencing of the goldfish growth hormone cDNA. General and Comparative Endocrinology. Vol. 101, pp: 139-44.
12
Moghim, M.; Kor, D.; Tavakolieshkalak, M. and Khoshghalb, M.B., 2006. Stock status of Persian Sturgeon (Acipenser persicus Borodin, 1897) along the Iranian coast of the Caspian Sea. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, No. 1, pp: 99-107.
13
Nicoll, C.S.; Steiny, S.S. and King, D.S., 1987. The primary structure of coho salmon growth hormone and its cDNA. General and Comparative Endocrinology. Vol. 68, pp: 387-399.
14
Paladini, A.C.; Pena, C. and Poskus, E., 1981. Molecular biology of growt hormone. CRC Crit. Rev. Biochem.
15
Vol. 15. pp: 25-56.
16
Peyush, P.; Moriyama, S.; Takahashi, A. and Kawauchi, H., 2000. Molecular Cloning of Growth Hormone Complementary DNA in Barfin Flounder (Verasper moseri). Marine Biotechnology. Vol. 2, pp: 21-26.
17
Pinheiro, J.S.; Wolff, J.L.S.; Araújo, R.C. and Hilsdorf, A.W.S., 2008. Molecular cloning and sequence analysis of growth hormone cDNA of Neotropical freshwater fish Pacu (Piaractus mesopotamicus). Genetics and Molecular Biology. Vol. 31, No. l, pp: 381-384.
18
Pourkazemi, M., 2006. Caspian Sea Sturgeon Conservation and Fisheries: Past present and Future. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, No. 1, pp: 12-16.
19
Rentier-Delrue, F.; Swennen, D.; Philippart, J.C.; L'hoir, C.; Lion, M.; Benrubi, O. and Martial, J.A., 1989. Tilapia Growth Hormone: Molecular Cloning of cDNA and Expression in Escherichia coli. Mary Ann Liebert. Vol. 8, No. 4, pp: 271-278.
20
Ruban, G.I.; Kholodova1, M.V.; Kalmykov, V.A. and Sorokin, P.A., 2011. A review of the taxonomic status of the Persian sturgeon (Acipenser persicus Borodin). Journal of Applied Ichthyology. Vol. 27, pp: 470-476.
21
Sekine, S.; Mizukami, T.; Nishi, T.; Kuwana, T.; Saito, A.; Sato, M.; Itoh, S. and Kawauchif, H., 1985. Cloning and expression of cDNA for salmon growth hormone in Escherichia coli. Applied Biology. Vol. 82, pp: 4306-4310.
22
Sciara, A.A.; Rubiolo, J.A.; Somoza, G.M. and Arranz, S.E., 2006. Molecular cloning, expression and immunological characterization of pejerrey (Odontesthes bonariensis) growth hormone. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 142, pp: 284-292.
23
Venugopal, T.; Mathavan, S. and Pandian, T.J., 2002. Molecular cloning of growth hormone encoding cDNA of Indian major carps by a modified rapid amplification of cDNA ends strategy. J. Biosci. Vol. 27, No. 3, pp: 261-272.
24
Xu, B.; Moriyama, S.; Zhang, P.J. and Miao, H.Z., 2001. The complete amino acid sequence of growth hormone and partial amino acid sequence of prolactin and somatolactin from sea perch (Lateolabrax japonicus). Aquaculture. Vol. 201, pp: 117-136.
25
Yom Din, S.; Hurvitz, A.; Goldberg, D.; Jackson K.; Levavi-Sivan, B. and Degani, G., 2008. Cloning of Russian sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii) growth hormone and insulin-like growth factor I and their expression in male and female fish during the first period of growth. Journal of Endocrinology. Vol. 31, pp: 201-210.
26
Zohar, Y., 1989. Endocrinology and fish farming: Aspects in reproduction, growth, and smoltification. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 7, pp: 395-405.
27
ORIGINAL_ARTICLE
رشد و قطر خار باله سینه ای بچه تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus) پرورشی جنوب دریای خزر
رشد و قطر خار باله سینه ای بچه تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus) پرورشیسایتهای جنوب شرقی و غربی دریای خزر پیش از رهاسازی به دریا بررسی گردید. پس از زیست سنجی بچه ماهیان، خار باله سینه ای سمت راست آن ها جدا گردید، وزن شد و اندازه آن ها ثبت گردید. هیچ تفاوت معنی داری در وزن و طول بچه ماهیان جنوب شرقی و غربی دریای خزر مشاهده نشد. شاخص چاقی هم تفاوت معنی داری بین دو منطقه نداشت (0/05<P). رابطه بین وزن بدن و وزن خار باله سینه ای در هر دو منطقه معنی دار بود. تفاوت معنی داری بین قطر مقطع خارهای باله سینه ای در دو ناحیه شرق و غرب وجود نداشت. منحنی رابطه میان طول با وزن بچه ماهیان به صورت ازلی بود، به گونه ای که بخش عمده رشد در روزهای ابتدایی زندگی مشاهده شد. این مطالعه نشان داد ویژگی های مشابه در رشد بچه تاس ماهیان ایرانی پرورشی نواحی جنوب شرقی و غربی دریای خزر وجود دارد که می تواند قبل از رهاسازی به دریا جهت شناخت شرایط آن ها برای اهداف حفاظتی مفید باشد.
http://www.aejournal.ir/article_63417_3456a47979cfe1ed38fb7ae92e976808.pdf
2017-12-22
231
234
تاس ماهی ایرانی
شاخص چاقی
رشد
خار باله سینه ای
شیما
بخشعلی زاده
shima@phd.guilan.ac.ir
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه گیلان، رشت، ایران
LEAD_AUTHOR
علی
بانی
bani@guilan.ac.ir
2
پژوهشکده حوضه آبی دریای خزر، دانشگاه گیلان، رشت، ایران
AUTHOR
Alizadeh, H., 2004. Introduction to the Caspian Sea. Tehran, Norbakhsh Press. 113 p.
1
Avigliano, E.; Saez, M.B.; Rico, R. and Volpedo, A.V., 2015. Use of otolith strontium: calcium and zinc: calcium ratios as an indicator of the habitat of Percophis brasiliensis Quoy & Gaimard, 1825 in the southwestern Atlantic Ocean. Neotropical Ichthyo. Vol. 13, pp: 187-194.
2
Bakhshalizadeh, S.; Bani, A. and Abdolmalaki, S., 2013. Comparative morphology of the pectoral fin spine of the Persian sturgeon Acipenser persicus, the Russian sturgeon Acipenser gueldenstaedtii, and the Starry sturgeon Acipenser stellatus in Iranian waters of the Caspian Sea. Acta Zoologica. Vol. 94, No 4, pp: 471-477.
3
Bakhshalizadeh, S.; Bani, A.; Abdolmalaki, S.; Nahrevar, R. and Rastin, R., 2011. Age, growth and mortality of the Persian Sturgeon, Acipenser persicus, in the Iranian waters of the Caspian Sea. Caspian Journal of Environmental Sciences. Vol. 9, No 2, pp: 159-167.
4
Berejikian, B.A.; Hard, J.J.; Tatara, C.P.; Van Doornik, D.M.; Swanson, P. and Larsen, D.A., 2016. Rearing strategies alter patterns of size-selective mortality and heritable size variation in steelhead trout. Canadian J of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 999, pp: 1-11.
5
Brennan, J.S. and Cailliet, G.M., 1989. Comparative age determination techniques for white sturgeon in California. Transactions of the American Fisheries Society. Vol. 118, No. 3, pp: 296-310.
6
Campana, S.; Chouinard, G.; Hanson, J. and Fréchet, A., 1999. Mixing and migration of overwintering Atlantic cod (Gadus morhua) stocks near the mouth of the Gulf of St. Lawrence. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 56, No. 10, pp: 1873-1881.
7
Campana, S.; Chouinard, G.; Hanson, J.; Frechet, A. and Brattey, J., 2000. Otolith elemental fingerprints as biological tracers of fish stocks. Fisheries Resea. Vol. 46, pp: 343-357.
8
Campana, S.E., 1984. Microstructural growth patterns in the otoliths of larval and juvenile starry flounder, Platichthys stellatus. Canadian J of Zoology. Vol. 62, pp: 1507-1512.
9
Campana, S.E., 1999. Chemistry and composition of fish otoliths: pathways, mechanisms and applications. Marine Ecology Progress Series. Vol. 188, pp: 263-297.
10
Campana, S.E.; Fowler, A.J. and Jones, C.M., 1994. Otolith elemental fingerprinting for stock identification of Atlantic cod (Gadus morhua) using laser ablation ICPMS. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 51, No. 9, pp: 1942-1950.
11
Campana, S.E. and Jones, C.M., 1993. Analysis of otolith microstructure data. Canadian Special Publication of Fisheries and Aquatic Sciences. 73 p.
12
Claiborne, A.M.; Miller, J.A.; Weitkamp, L.A.; Teel, D.J. and Emmett, R.L., 2014. Evidence for selective mortality in marine environments: the role of fish migration size, timing, and production type. Marine Ecology Progress Series. Vol. 515, pp: 187-202.
13
Debicella, J., 2005. Accuracy and precision of fin-ray aging for gag grouper (Mycteroperca microlepis). Master’s thesis, University of Florida, Gainesville, FL p.
14
Folkvord, A. and Otterå, H., 1993. Effects of initial size distribution, day length, and feeding frequency on growth, survival, and cannibalism in juvenile Atlantic cod (Gadus morhua L.). Aquaculture. Vol. 114, No. 3, pp: 243-260.
15
Kerr, L.A. and Campana, S.E., 2013. Chemical composition of fish hard parts as a natural marker of fish stocks. Stock Identification Methods: Applications in Fishery Science. pp: 205-234.
16
Koch, J.; Schreck, W. and Quist, M., 2008. Standardised removal and sectioning locations for shovelnose sturgeon fin rays. Fisheries Management and Ecol. Vol. 15, pp: 139-145.
17
Moghim, M.; Kor, D.; Tavakolieshkalak, M. and Khoshghalb, M., 2006. Stock status of Persian Sturgeon (Acipenser persicus Borodin, 1897) along the Iranian coast of the Caspian Sea. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, pp: 99-107.
18
Pannella, G., 1971. Fish otoliths: daily growth layers and periodical patterns. Science. Vol. 173, pp: 1124-1127.
19
Pauly, D.; Alder, J.; Bennett, E.; Christensen, V.; Tyedmers, P. and Watson, R., 2003. The future for fisheries. Science. Vol. 302, pp: 1359-1361.
20
Price, S.A.; Friedman, S.T. and Wainwright, P.C., 2015. How predation shaped fish: the impact of fin spines on body form evolution across teleosts. In Proceedings of Royal Society B. Vol. 282, pp: 1428.
21
Pourkazemi, M., 2006. Caspian Sea sturgeon conservation and fisheries: past present and future. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, pp: 12-16.
22
Ricker, W.E., 1973. Linear regressions in fishery research. Journal of the Fisheries Research Board of Canada. Vol. 30, pp: 409-434.
23
Ricker, W.E., 1975. Computation and Interpretation of Biological Statistics of Fish Population. Bulletin Fisheries Research Board of Canada. Vol. 191, pp: 382.
24
Rosenberg, A. and Haugen, A., 1982. Individual growth and size-selective mortality of larval turbot (Scophthalmus maximus) reared in enclosures. Marine Biology. Vol 72, No. 1, pp: 73-77.
25
Saborowski, R. and Buchholz, F., 1996. Annual changes in the nutritive state of North Sea. Journal of Fish Biology. Vol. 49, pp: 173-194.
26
Schismenou, E.; Giannoulaki, M.; Tsiaras, K.; Lefkaditou, E.; Triantafyllou, G. and Somarakis, S., 2014. Disentangling the effects of inherent otolith growth and model-simulated ecosystem parameters on the daily growth rate of young anchovies. Marine Ecology Progress Series. Vol. 515, pp: 227-237.
27
Sponaugle, S., 2009. Daily otolith increments in the early stages of tropical fish. Tropical Fish Otoliths: Information for Assessment, Management and Ecol. Springer. pp: 93-132.
28
SPSS. 1997. SPSS Base 7.5 for Windows. SPSS, Chicago, IL.
29
Van Poorten, B.T. and Walters, C.J., 2016. How can bioenergetics help us predict changes in fish growth patterns? Fisheries Research. Vol. 180, pp: 23-30.
30
Wells, B.K.; Rieman, B.E.; Clayton, J.L.; Horan, D.L. and Jones, C.M., 2003. Relationships between water, otolith, and scale chemistries of westslope cutthroat trout from the Coeur d'Alene River, Idaho: the potential application of hard-part chemistry to describe movements in freshwater. Transactions of the American Fisheries Society. Vol. 132, pp: 409-424.
31
Wootton, R., 1999. Ecology of teleost fishes. Croom Helm, London.
32
ORIGINAL_ARTICLE
مدل سازی مطلوبیت زیستگاه ماهی سفید (Rutilus frisii kutum) بر مبنای رویه ارزیابی چند معیاره (MCE) در حوضه جنوبی دریای خزر
تخریب زیستگاه یکی از تهدیدات جدی در احیای ذخایر ماهی هاست و می تواند بازده صید تجاری در مناطق ساحلی را با خطر جدی روبه رو کند و از طرفی مدل سازی مطلوبیت زیستگاه، به عنوان یک راه حل عملی برای حفظ و حمایت اکوسیستم ها و زیستگاه های دریایی است. در این پژوهش به مدل سازی مطلوبیت زیستگاه ماهی سفید در حوضه جنوبی دریای خزر براساس معیارهای عمق، غلظت کلروفیل سطحی، تابش فعال فتوسنتزی، تغییرات تراز آب و دمای سطحی آب پرداخته شد. نتایج مطالعه حاضر نشان داد که بیش ترین میزان مطلوبیت زیستگاهی ماهی سفید در بخش غربی حوضه جنوبی دریای خزر (اندکس های 24، 25 و 15) می باشد و فاکتورهای عمق و غلظت کلروفیل بیش ترین تأثیر را در مدل سازی داشته است. نتایج ارزیابی صحت سناریوهای وزنی نیز نشان داد که در بهترین سناریو میزان ROC برابر با 0/69 بوده که براین اساس پیشنهاد می شود خروجی اینکار به عنوان معیاری برای انتخاب مناطق حفاظت شده دریایی و مکان یابی مناطق پرورش در قفس و دیگر مدل های خدمات اکوسیستمی در بخش جنوبی دریای خزر مورد استفاده قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_63429_5ee2a74ec490ce31a790a2e351835f51.pdf
2017-12-22
235
246
ماهی سفید
مدل سازی مطلوبیت زیستگاه
ارزیابی چند معیاره (MCE)
حوضه جنوبی دریای خزر
داریوش
آشتاب
ashtab.dariush@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
AUTHOR
مهدی
غلامعلی فرد
gholamalifard@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
LEAD_AUTHOR
نعمت الله
محمودی
mahmoudi.nemat@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران
AUTHOR
امینیان فتیده، ب.؛ حسین زاده صحافی، ه.؛ شعبانی، ع.؛ یغمایی، ف. و شفیعی ثابت، س.، 1387. تعیین مراحل رسیدگی جنسی ماهی سفید نر دریای مازندران با کمک شاخص های زیستی. نشریه علوم دانشگاه تربیت معلم. سال 8، شماره 2، صفحات 10 تا 17.
1
رضوی صیاد، ب.، 1374. ماهی سفید. موسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران. 165 صفحه.
2
عبدلی، ا. و نادری، م.، 1387. تنوع زیستی ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر. انتشارات علمی آبزیان. 237 صفحه.
3
فضلی، ح.؛ کر، د. و دریانبرد، غ.، ۱۳۹۳. پراکنش زمانی و مکانی ماهی سفید (Rutilus frisii kutum) در سواحل ایرانی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. سال 23، شماره 1، صفحات 63 تا 74.
4
مالچفسکی، ی.، 1392. سامانه اطلاعات جغرافیایی و تحلیل تصمیم چندمعیاری. ترجمه اکبر پرهیزکار و عطا غفاری گیلانده، انتشارات سازمان مطالعه و تدوین کتب علوم انسانی دانشگاهها (سمت). چاپ سوم.
5
موسوی، ز.، 1389. استفاده از روش ارزیابی چندمعیاره در محیط GIS برای زون بندی منطقه ناژوان در شهر اصفهان. پایان نامه کارشناسی ارشد رشته محیط زیست، دانشکده شیلات، مرتع و محیط زیست، دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. صفحات 7 تا 10.
6
مومنی،ا.،1390. انتخاب سیستماتیک لکه های حفاظتی استان گلستان با استفاده از الگوریتم مذاب سازی شبیه سازی شده. پایان نامه کارشناسی ارشد محیط زیست. دانشگاه تهران. 140صفحه.
7
ولی پور، آ. و خانی پور، ع.آ.، 1388، ماهی سفید جواهر دریای خزر. انتشارات مرکز تحقیقات شیلات، تهران.
8
Abdolhay, H.; Daud, S.; Rezvani Ghilkolahi, S.; Pourkazemi, M.; Siraj, S. and Abdul Satar, M., 2011. Fingerling production and stock enhancement of Mahisefid (Rutilus frisii kutum) lessons for others in the south of Caspian Sea. Reviews in Fish Biology and Fisheries. Vol. 21, pp: 247-257.
9
Anderson, M.C.; Watts, J.M.; Freilich, J.E.; Yool, S.R.; Wakefield, G.L.; Mccaulery, J.F. and Fahnestock, A., 2000. Regression- tree modeling of desert tortoise habitat in the central Mojave Desert. Ecological Applications. Vol. 10, pp: 890-897.
10
Bani, A. and Haghi Vayghan, A., 2011. Temporal variations in haematological and biochemical indices of the Caspian kutum, Rutilusfrisiikutum. Ichthyological Research. Vol. 58, No. 2, pp: 126-133.
11
Bartoszewicz, M.; Okarma, H.; Zalewski, A. and Szczęsna, J., 2008. Ecology of the raccoon (Procyon lotor) from western Poland. Annales Zoologici Fennici. Vol. 45, No. 4, pp: 291-298.
12
Birol Kara, A.; Wallcraft, A.J.; Metzger, E.J. and Gunduz, M., 2010. Impacts of freshwater on the seasonal variations of surface salinity and circulation in the Caspian Sea. Continental Shelf Research. Vol. 30, pp: 1211-1225.
13
Burrough, P.A., 1989. Fuzzy mathematical methods for soil survey and land evaluation. Journal of Soil Science. Vol. 40, pp: 477-492.
14
Crec’hriou, R.; Bonhomme, P.; Criquet, G.; Cadiou, G.; Lenfant, P.; Bernard, G.; Roussel, E.; Le Dire ´ach L. and Planes, S., 2008. Spatial patterns and GIS habitat modelling of fish in two French Mediterranean coastal areas. Hydrobiologia. Vol. 612, pp: 135-153.
15
Eastman, R.J., 2015. TerrSet Manual, Worcester, MA: Clark University. 392 p.
16
Eastman, R.J., 2012. Idrisi guid to GIS and Image processing. Accessed in Idrisi Selva 17.00, Worcester, MA: Clark University. 354 p.
17
Eckert, S.A.; Moore, J.E.; Dunn, D.C.; Buiten, R.S.; Eckert, K.L. and Halpin, P.N., 2008. Modeling loggerhead turtle movement in the mediterranean: importance of body size and oceanography. Ecological Applications, Vol. 18, pp: 290-308.
18
Fazli, H.; Daryanabard, G.; Salmanmahiny, A.; Abdolmaleki, S.; Bandani, G. and Afraei Bandpei, M., 2012. Fingerling release program, biomass trend and evolution of the condition factor of Caspian Kutum during the 1991-2011 period. Cybium. Vol. 36, pp: 545-550.
19
Foley, M.M.; Halpern, B.S.; Micheli, F.; Armsby, M.H.; Caldwell, M.R.; Crain, C.M.; Prahler, E.; Rohr, N.; Sivas, D.; Beck, M.W.; Carr, M.H.; Crowder, L.B.; Emmett, J.; Hacker, S.D.; McLeod, K.L.; Palumbi, S.R.; Peterson, C.H.; Regan, H.M.; Ruckelshaus, M.H.; Sandifer, P.A. and Steneck, R.S., 2010. Guiding ecological principles for marine spatial planning. Mar Policy. Vol. 34, pp: 955-966.
20
Frouin, R. and Murakami, H., 2007. Estimating photosynthetically available radiation at the ocean surface from ADEOS-II global imager data. Journal of Oceanography. Vol. 63, No. 3, pp: 493-503.
21
Granados-Dieseldorff, P., 2009. A GIS-based spatial model for predicting habitat suitability for juvenile mutton snapper (Lutjanus analis) in Belize. In: Proceedings of the Gulf and Caribbean Fisheries Institute. Vol. 61, pp: 191-197.
22
Hall, S.J., 1998. The effects of fishing on marine ecosystems and communities. Blackwell Science, Oxford.
23
Karpinsky, M.G., 2010. Review: the Caspian Sea benthos: unique fauna and community formed under strong grazing pressure. Marine Pollution Bulletin. Vol. 61, No. 4-6, pp: 156-161.
24
Kostianoy A.G. and Kosarev, A.N., 2005. The Caspian Sea Environment, Springer Science and Business Media. Vol. 5.
25
Mack, E.L.; Firbank, L.G.; Bellary, P.E.; Hinsley, S.A. and Veitch, N., 1997. The comparison of remotely sensed and ground based habitat area data using species area models. applied ecology. Vol. 34, pp: 1222-1228.
26
MacMillana, H.; Moorea, A.; Augéa, A. and Chilversd, L., 2016. IS-based multi-criteria analysis of breeding habitats for recolonising species: New Zealand sea lions. Ocean and Coastal Management. Vol. 130, pp: 162-171.
27
Mahini, A.S. and Gholamalifard, M., 2006. Siting MSW landfills with a weighted linear combination methodology in a GIS environment. International Journal of Environmental Science and Technology. Vol. 3, No. 4, pp: 435-445.
28
Mehri, A.; Salmanmahiny, A.; Mirkarimi, S.H. and Rezaei, H.R., 2014. Use of optimization algorithms to prioritize protected areas in Mazandaran Province of Iran. Journal for Nature Conservation. Vol. 22, No. 5, pp: 462-470.
29
Nasrollahzadeh, A., 2010. Caspian Sea and its ecological challenges. Caspian Journal of Environmental Sciences. Vol. 8, pp: 97-104.
30
Ouraji, H.; Khalili, K.; Ebrahimi, G. and Jafarpour, S., 2011. Determination of the optimum transfer time of kutum (Rutilus frisii kutum) larvae from live food to artificial dry feed. Aquaculture International. Vol. 19, pp: 683-691.
31
Paudel, P.K.; Hais, M. and Kindlmann, P., 2015, Zoological Studies,54:37. Doi:10.1186/s40555-015-0116-9.
32
Pikitch, E.K.; Santora, C.; Babcock, E.A.; Bakun, A.; Bonfil, R. and Conover, D.O., 2004. Ecosystem based fishery management. Science. Vol. 305, pp: 346-347.
33
Roberts, J.J.; Best, B.D.; Dunn, D.C.; Treml, E.A. and Halpin, P.N., 2010. Marine geospatial ecology tools: An integrated framework for ecological geoprocessing with ArcGIS, Python, R, MATLAB, and C++. Environmental Modelling and Software. Vol. 25, pp: 1197-1207.
34
Saravi Nasrollahzadeh, H.; Din, Z.B.; Foong, S.Y. and Makhlough, A., 2008. Trophic status of the Iranian Caspian Sea based on water quality parameters and phytoplankton diversity. Continental Shelf Research. Vol. 28, pp: 1153-1165.
35
Schmucker, K.J., 1982. Fuzzy Sets, natural language computations and risk analysis (Computer Science Press). pp: 7.
36
Sparrevohn, C.R.; Dinesen, G.E.; Andersen, J.H. and Reker, J.B., 2008. Spatial prediction of nursery grounds for juvenile flatfish in the Danish Kattegat: From: Mapping and modeling of marine habitats in the Baltic Sea region. BALANCE. BALANCE Interim Report. No. 27.
37
Stevick, P.T.; McConnell, B.J. and Hammond, P.S., 2002. Patterns of movement. In: Hoelzel, A.R. (Ed.), Marine Mammal Biology: An Evolutionary Approach. Blackwell Science, Oxford.
38
Taheri, M.; Foshtomi, M.; Noranian, M. and Mira, S., 2012. Spatial distribution and biodiversity of macrofauna in the southeast of the Caspian Sea, Gorgan Bay in relation to environmental conditions. Ocean Science Journal. Vol. 47, pp: 113-122.
39
Valavanis, V.D.; Georgakarakos, S.; Kapantagakis, A.; Palialexis, A. and Katara, I., 2004. A GIS environmental modelling approach to essential fish habitat designation. Ecological Modelling. Vol. 178, No. 3-4, pp: 417-427.
40
Valavanis, V.; Pierce, G.; Zuur, A.; Palialexis, A.; Saveliev, A.; Katara, I. and Wang, J., 2008. Modelling of essential fish habitat based on remote sensing, spatial analysis and GIS. Hydrobiologia. Vol. 612, No. 1, pp: 5-20.
41
Valavanis, V.D.; Georgakarakos, S.; Koutsoubas, D.; Arvanitidis, C. and Haralabous, J., 2002. Development of a marine information system for Cephalopod fisheries in the Greek Seas (Eastern Mediterranean). Bull Mar Sci. Vol. 71, pp: 867-882.
42
Vayghan, A.H.; Zarkami, R.; Sadeghi, R. and Fazli,H., 2016. Modeling habitat preferences of Caspian kutum, Rutilus frisii kutum (Kamensky, 1901) (Actinopterygii, Cypriniformes) in the Caspian Sea. Hydrobiologia. Vol. 766, No. 1, pp: 103-119.
43
Vayghan, A.H.; Poorbagher, H.; Shahraiyni, H.T.; Fazli, H. and Saravi, H.N., 2013. Suitability indices and habitat suitability index model of Caspian kutum (Rutilus frisii kutum) in the southern Caspian Sea. Aquatic Ecology. Vol. 47, No. 4, pp: 441-451.
44
Voogd, H., 1983. Multicriteria evaluation for urban and regional planning. Pion, Ltd., London.
45
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر تغذیه با ناپلیوس آرتمیای استرس دیده و ریشه کاسنی (Cichorium intybus) بر شاخص های رشد و زیستسنجی گوپی (Poecilia reticulate)
ناپلیوس آرتمیا نهتنها یک غذای مفید باارزش غذایی بالا برای دوران لاروی اغلب آبزیان میباشد بلکه می تواند به عنوان حامل بسیاری از افزودنی ها نیز مطرح باشد. ایجاد استرس کنترلشده در ناپلیوس آرتمیا می تواند موجب تحریک و تولید پروتئین های شوک حرارتی (HSPs) شود که تغذیه با آن باعث رشد و بقاء بهتر موجود شود. در این تحقیق تأثیر تغذیهبا ناپلیوس آرتمیای بدون استرس و استرس دیده و ریشه کاسنی به عنوان یک ماده پریبیوتیک در کنار غذای کنسانتره (تیمار شاهد) درمجموع 7 تیمار،بر شاخص های رشد و شاخص های زیست سنجی بچه ماهی گوپی (Poecilia reticulate)بررسی شد. تعداد 51 ماهی در هر تیمار با اندازه تقریباً یکسان، به صورت کاملاً تصادفی در ظروف 3 لیتری تیماربندی و به مدت 35 روز در 3 وعده به میزان 9% وزن بدن غذادهی شدند. در ابتدا و انتهای دوره غذادهی ماهی ها زیست سنجی شدند و نتایج آن ها با یکدیگر مقایسه گردید. نتایج تمامی شاخص های مورد مطالعه هم چون افزایش وزن، افزایش طول، ضریب رشد ویژه، ضریب چاقی و درصد افزایش وزن نشان داد که تغذیه با ناپلیوس آرتمیای استرس دیده تأثیر بهتری در اعلب فاکتورها داشته است. شاخص های ذکر شده به جز ضریب چاقی در تیمارهای تغذیه شده با ناپلی افزایش بیش تری داشتند (0/05>P). تیمارهای کاسنی و شاهد تغذیهشده با غذای کنسانتره نتوانستند رقابتی با دیگر تیمارهای تغذیهشده با غذای زنده داشته باشند (0/05<P).
http://www.aejournal.ir/article_63430_d019a8cdbff5a88c91b1b7953d5eb1ed.pdf
2017-12-22
247
254
آرتمیا
پروتئین های شوک حرارتی
کاسنی
گوپی
رشد
ناپلیوس
هاله
خلیل پور
1
گروه بیوتکنولوژی، پژوهشکده مطالعات دریاچه ارومیه، دانشگاه ارومیه، کد پستی: 5714944514
AUTHOR
رامین
منا ف فر
raminmanaffar@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه ارومیه، کد پستی: 5756151818
LEAD_AUTHOR
وحید
افشارهزارخانی
3
گروه بیوتکنولوژی، پژوهشکده مطالعات دریاچه ارومیه، دانشگاه ارومیه، کد پستی: 5714944514
AUTHOR
مهران
حبیبی رضایی
4
گروه سلولی و مولکولی، دانشکده زیست شناسی، دانشگاه تهران، صندوق پستی: 1417614418
AUTHOR
علی اکبر
موسوی موحدی
5
گروه بیوفیزیک، مرکز تحقیقات بیوشیمی و بیوفیزیک، دانشگاه تهران، صندوق پستی: 1417614418
AUTHOR
اکرمی، ر.؛ چیت ساز، ح.؛ دشتیان، ص. و رازقی منصور، م.، 1392. تأثیر پروبیوتیک اینولین و مانان الیگوساکارید به صورت مجزا و توام با عملکرد رشد، بازماندگی، ترکیب لاشه و مقاومت به استرس شوری در بچه ماهی سفید. فصلنامه علوم و فنون شیلات. دوره 2، شماره 3، صفحه 17.
1
جعفری، گ.؛ مناففر، ر. و زارع، ص.، 1393. تأثیر تغذیه با مخمر تحریکشده حاوی پروتئین های شوک حرارتی HSPبر میزان رشد، بقاء و مقاومت در برابر استرس های محیطی در دو گونه Artemia urmiana و Artemia franciscana.. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 6، شماره 4، صفحات 93 تا 101.
2
خلیل پور، ه.، 1395. تأثیر تغذیه با ناپلیوس آرتمیا حاوی پروتئین های شوک حرارتی بر ویژگی های رشد، بقاء و مقاومت نسبت به استرس های محیطی در ماهی گوپی. پایان نامه کارشناسی ارشد زیست فناوری دریا. دانشگاه ارومیه. 135 صفحه.
3
Akbary, P.; Hosseini, S.A.; Imanpoor, M.; Sudagar, M.and Makhdomi, N.M., 2007. Comparison between live food and artificial diet on survival rate, growth and body chemical composition of Oncorhynchus mykiss larvae. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 9, No. 1, pp: 19-32.
4
Akrami, R.; Ghelichi, A. and Zarei, E., 2012. Effect of Dietary of supplementation prebiotic inulin on growth, survival, lactic acid bacteria loading and body composition of carp juvenile (Cyprinus carpio). Journal of Fisheries, Islamic Azad University Azadshahr Branch. Vol. 5, No. 4, pp: 87-94.
5
Bagheri, T.; Hedayati, S.A.; Yavari, V.; Alizade, M. and Farzanfar, A., 2008. Growth, survival and gut microbial load of rainbow trout (Onchorhynchus mykiss) fry given diet supplemented with probiotic during the two months of first feeding. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences, Vol. 8, No. 1, pp: 43-48.
6
Bengtson, D.A.; Leger, P. and Sorgeloos, P., 1991. Use of Artemiaas a food source for aquaculture. In: R.A. Broune; P. Sorgeloos and C.N.A. Trotman (eds.), Artemia biology. CRC Press, Boca Raton, FL., USA. pp: 255-280.
7
Bouhnik, Y.; Pochart, P.; Marteau, P.; Arlet, G.; Goderei, I. and Rambaud, J.C., 1992. Fecal recovery in humans of viable Bifidobacterium sp. ingested in fermented milk. Gastroenterology. Vol. 102, pp: 875-878.
8
Baruah, K.; Norouzitallab, P.; Shihao, L.; Sorgeloos, P. and Bossier, P., 2013. Feeding truncated heat shock protein 70s protect Artemia franciscana against virulent Vibrio campbellii challenge. Fish & shellfish immunology, Vol. 34, No. 1, pp. 183-191.
9
Baruah, K.; Ranjan, J.; Sorgeloos, P. and Bossier, P., 2010. Efficacy of heterologous and homologous heat shock protein 70s as protective agents to Artemia franciscana challenged with Vibrio campbellii. Fish and shellfish immunology. Vol. 29, No. 5, pp: 733-739.
10
Crittenden, R.G. and Tannock, G.W., 1999. Probiotics: A critical review. Horizon Scientific. Wynondhan. UK. pp: 141-156.
11
FAO. 2014. Aquaculture Department. 2014. The state of world fisheries and aquaculture 2014. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome. 243 P.
12
Firouzbakhsh, F.; Noori, F.; Khalesi, M.K. and Jani Khalili, K., 2011. Effects of a probiotic, protexin, on the growth performance and hematological parameters in the Oscar (Astronotus ocellatus) fingerlings. Fish physiology and biochemistry. Vol. 37, No. 4, pp: 833-842.
13
Franck, A.M.E., 2000. Inulin and oligofructose. LFRA Ingredient Handbook: Prebiotics and Probiotics. Leatherhead Publishing, Surrey. pp: 1-18.
14
Gatesoupe, F.J., 1999. The use of probiotics in aquaculture. Aquaculture. Vol. 180, No. 1–2, pp: 147-165.
15
Giri, S.S.; Sahoo, S.K.; Sahu, B.B.; Sahu, A.K.; Mohanty, S.N.; Mukhopadhyay, P.K. and Ayyappan, S., 2002. Larval survival and growth in Wallago attu (Bloch and Schneider): effects of light, photoperiod and feeding regimes. Aquaculture. Vol. 213, No.1, pp: 151-161.
16
Gomez Gil, B.; Thompson, F.L.; Thompson, C.C. and Swings, J., 2003. Vibrio pacinii sp. nov., from cultured aquatic organisms. International journal of systematic and evolutionary microbiology. Vol. 53, No. 5, pp: 1569-1573.
17
Grant, A.A.; Baker, D.; Higgs, D.A.; Brauner, C.J.; Richards, J.G.; Balfry, S.K. and Schulte, P.M., 2008. Effects of dietary canola oil level on growth, fatty acid composition and osmoregulatory ability of juvenile fall chinook salmon (Oncorhynchus tshawytscha). Aquaculture. Vol. 277, No. 3, pp: 303-312.
18
Hajjej, G.; Hattour, A.; Hajjej, A.; Allaya, H.; Jarboui, A. and Bouain, A., 2011. Biometry, length-length and length-weight relationships of little tuna Euthynnus alletteratus in the Tunisian waters. Journal of fisheries and Aquatic Science. Vol. 6, No. 3, pp: 256.
19
Hoseinifar, S.H.; Roosta, Z.; Hajimoradloo, A. and Vakili, F., 2015. The effects of Lactobacillus acidophilus as feed supplement on skin mucosal immune parameters, intestinal microbiota, stress resistance and growth performance of black swordtail (Xiphophorus helleri). Fish & shellfish immunology. Vol. 42, No. 2, pp: 533-538.
20
Huang, S.S.Y.; Fu, C.H.L.; Higgs, D.A.; Balfry, S.K.; Schulte, P.M. and Brauner, C.J., 2008. Effects of dietary canola oil level on growth performance, fatty acid composition and ionoregulatory development of spring chinook salmon, Oncorhynchus tshawytscha. Aquaculture. Vol. 274, No. 1, pp: 109-117.
21
Hung, S.S.; Lutes, P.B.; Conte, F.S. and Storebakken, T., 1989. Growth and feed efficiency of white sturgeon (Acipenser transmontanus) sub-yearlings at different feeding rates. Aquaculture. Vol. 80, No. 1, pp: 147-153.
22
Ibrahem, M.D.; Fathi, M.; Mesalhy, S. and El-Aty, A.A., 2010. Effect of dietary supplementation of inulin and vitamin C on the growth, hematology, innate immunity, and resistance of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 29, No. 2, pp: 241-246.
23
Irianto, A. and Austin, B., 2002. Probiotics in aquaculture. Journal of Fish Diseases. Vol. 25, No. 11, pp: 633-642.
24
Iwama, G.K.; Thomas, P.T.; Forsyth, R.B. and Vijayan, M.M., 1998. Heat shock protein expression in fish. Reviews in Fish Biology and Fisheries. Vol. 8, No. 1, pp: 35-56.
25
Kanazawa, A.; Teshima, S.I. and Ono, K., 1979. Relationship between essential fatty acid requirements of aquatic animals and the capacity for bioconversion of linolenic acid to highly unsaturated fatty acids. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Comparative Biochemistry. Vol. 63, No. 3, pp: 295-298.
26
Kedia, G.; Wang, R.; Patel, H. and Pandiella, S.S., 2007. Use of mixed cultures for the fermentation of cereal-based substrates with potential probiotic properties. Process Biochemistry, Vol. 42, No. 1, pp: 65-70.
27
Kim, J.; Massee, K.C. and Hardy, R.W., 1996. Adult Artemia as food for first feeding coho salmon (Oncorhynchus kisutch). Aquaculture. Vol. 144, No. 1, pp: 217-226.
28
Koueta, N.; Boucaud-Camou, E. and Noel, B., 2002. Effect of enriched natural diet on survival and growth of juvenile cuttlefish Sepia officinalis L. Aquaculture. Vol. 203, No. 3, pp: 293-310.
29
Lavens, P. and Sorgeloos, P., 2000. The history, present status and prospects of the availability of Artemia cysts for aquaculture. Aquaculture. Vol. 181, No. 3, pp: 397-403.
30
Léger, P.; Bengtson, D.A.; Simpson, K.L. and Sorgeloos, P., 1986. The use and nutritional value of Artemia as a food source. Oceanography and Marine Biology: An Annual Review. Vol. 24. pp: 521-623.
31
Lindquist, S. and Craig, E.A., 1988. The heat-shock proteins. Annual review of genetics. Vol. 22, No.1, pp: 631-677.
32
Magurran, A.E., 2005. Evolutionary ecology: The Trinidadian guppy. Oxford University Press, Oxford, U.K. 24 P.
33
Mahious, A.S. and Ollevier, F., 2005. Probiotics and prebiotics in aquaculture: review. In: 1st Regional workshop on techniques for enrichment of live food for use in larviculture AAARC, Urmia, Iran. pp: 17-26.
34
Manaffar, R., 2012. Genetic diversity of Artemia populations in Lake Urmia, Iran. PhD thesis, Ghent University, Belgium. 160 P.
35
Millamena, O.M., 1996. Training course on fish nutrition. Part: Lipids and Fatty Acids. pp: 1-19.
36
Mira, S.M., 2011. Effect of dietary inulin as prebiotic on growth, survival and intestinal bacterial density of kutum (Rutilus frisii kutum) fry. Thesis for M.Sc. of Islamic Azad University, Qaemshahr Branch. P: 77.
37
Olsen, R.E.; Myklebust, R.; Kryvi, H.; Mayhew, T.M. and Ringø, E., 2001. Damaging effect of dietary inulin on intestinal enterocytes in Arctic charr (Salvelinus alpinus L.). Aquaculture Research. Vol. 32, No. 11, pp: 931-934.
38
Pochart, P.; Marteau, P.; Bouhnik, Y.; Goderel, I.; Bourlioux, P. and Rambaud, J.C., 1992. Survival of bifidobacteria ingested via fermented milk during their passage through the human small intestine: an in vivo study using intestinal perfusion. The American journal of clinical nutrition. Vol. 55, No. 1, pp: 78-80.
39
Ringø, E. and Birkbeck, T.H., 1999. Intestinal microflora of fish larvae and fry. Aquaculture research. Vol. 30, No. 2, pp: 73-93.
40
Ringø, E.; Sperstad, S.; Myklebust, R.; Refstie, S. and Krogdahl, Å., 2006. Characterisation of the microbiota associated with intestine of Atlantic cod (Gadus morhua L.): the effect of fish meal, standard soybean meal and a bioprocessed soybean meal. Aquaculture. Vol. 261, No. 3, pp: 829-841.
41
Roberfroid, M., 1993. Dietary fiber, inulin, and oligofructose: a review comparing their physiological effects. Critical Reviews in Food Science & Nutrition. Vol. 33, No. 2, pp: 103-148.
42
Roberfroid, M.B., 2005. Inulin type Fructans: Functional Food Ingredients. New York: CRC Press.
43
Roozbehfar, R.; Jamali, H. and Hematian, R., 2012. The potential of Russian Sturgeon (Acipenser gueldenstaedtii) in exploitation of Artemia urmiana in comparison with Daphnia sp. and its mixture. World Appl. Sci. J. Vol. 20, No. 6, pp: 776-780.
44
Roozbehfar, R.; Jamali, H.; Jafari, M. andHematian,R., 2013. A Comparative Study on the Growth Rate of Persian Sturgeon, Acipenserpersicus, Larvae Fed with Artemia urmiana and Daphnia sp. Global Veterinaria.Vol. 10, No. 2, pp: 116-120.
45
Rottmann, R.W.; Francis Floyd, R.; Reed, P.A. and Durborow, R., 1992. Submitting a sample for fish kill investigation. SRAC Publication. No. 472, pp: 2.
46
Sanders, B.M.; Nguyen, J.; Martin, L.S.; Howe, S.R. and Coventry, S., 1995. Induction and subcellular localization of two major stress proteins in response to copper in the fathead minnow Pimephales promelas. Comp. Biochem. Physiol. Vol. 112, No. 3, pp: 335-343.
47
Sorgeloos, P.; Dhert, P. and Candreva, P., 2001. Use of the brine shrimp, Artemia spp., in marine fish larviculture. Aquaculture. Vol. 200, No. 1, pp: 147-159.
48
Soundarapandian, P. and Saravanakumar, G., 2009. Effect of Different Salinities on the Survival and Growth of Artemia Spp Current Research Journal of Biological Sciences. Vol. 1, No. 2, pp: 20-22.
49
Verschuere,L.;Rombaut, G.; Sorgeloos, P. and Verstraete, W., 2000. Probiotic Bacteria as Biological Control Agents in Aquaculture. Microbial Molecular Biology Reviews. Vol. 64, No. 4, pp: 655-671.
50
Voragen, A.G., 1998. Technological aspects of functional food-related carbohydrates. Trends in Food Science and Technology. Vol. 9, No. 8, pp: 328-335.
51
Wang, X.; Kim, K.W. and Bai, S.C., 2003. Comparison of L-ascorbyl-2-monophosphate-Ca with L-ascorbyl-2-monophosphate-Na/Ca on growth and tissue ascorbic acid concentrations in Korean rockfish (Sebastes schlegeli). Aquaculture. Vol. 225, No. 1, pp: 387-395.
52
Yousefian, M. and Sheikholeslami Amiri, M., 2009. A review of the use of prebiotic in aquaculture for fish and shrimp. African Journal of Biotechnology. Vol. 8, No. 25, pp: 7313-7318.
53
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی پراکنش و ترکیب گونه ای ماهیان در منطقه شرق دریای خزر (گهرباران)
هدف از این مطالعه تعیین ترکیب گونه ای، پراکنش زمانی و مکانی ماهیان مختلف در سه روش مختلف صید سواحل جنوبی دریای خزر (منطقه گهرباران) طی آذر 1392 تا تیر 1393 می باشد. براساس نتایج به دست آمده در پره ریز چشمه 17 گونه از انواع ماهیان صید شدند که بیش ترین تعداد ماهیان را دو گونه Neogobius caspia و boyeriAtherina به ترتیب 39/73 و 28/61 درصد از کل صید را به خود اختصاص دادند. در دام گوشگیر 14 گونه صید شده و دو گونه Clupeonella cultriventris و Alosa braschnikowi، به ترتیب 28/12 و 27/73 درصد و در پره های صیادی نیز فقط 6 گونه صید شده و گونه های Rutilus kutum و Liza aurata به ترتیب 73/05 و 24/67 درصد از کل صید را به خود اختصاص دادند. بین میانگین شاخص های تنوع شانون – وینر، غنای گونه ای و شاخص یکنواختی در روش های مختلف صید اختلاف معنی داری وجود داشت (0/05>P). میانگین شاخص های تنوع شانون – وینر و غنای گونه ای در روش پره صیادی کم تر از صید پره ریز چشمه و دام گوشگیر بود و میانگین شاخص یکنواختی پره ریز چشمه کم تر از دو روش دیگر محاسبه شد. براساس این نتایج تنوع گونه ای در منطقه حساس گهرباران که در نزدیکی نیروگاه نکا و بندر امیرآباد واقع شده کم تر از تنوع گونه ای کل منطقه شرقی در سواحل ایران در دریای خزر می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_63431_b56c18881ae97c25886a9fe34f60d69b.pdf
2017-12-22
255
262
ترکیب گونه ای
پره ساحلی
دام گوشگیر
دریای خزر
حسن
فضلی
hn_fazli@yahoo.com
1
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران
LEAD_AUTHOR
غلامرضا
دریانبرد
mailto:daryanabard@gmail.com
2
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران
AUTHOR
مهدی
نادری
naderi_j@yahoo.com
3
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران
AUTHOR
داود
کر
mailto:so_kor@yahoo.com
4
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران
AUTHOR
علی اصغر
جانباز
aliasgharjanbaz@yahoo.com
5
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران
AUTHOR
محمدعلی
افرائی
6
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، ایران
AUTHOR
دریانبرد، غ.، 1392. بررسی برخی از شاخصهای بیولوژیکی ماهیان استخوانی در سواحل جنوبی دریای خزر. موسسه تحقیقاتی علوم شیلاتی کشور. 132 صفحه.
1
دریانبرد، غ.؛ عبدالملکی، ش.؛ کر، د. و بندانی، غ.، 1388. ارزیابی ذخایر ماهیان استخوانی درسواحل ایرانی دریای خزر (86ـ1384). مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 158 صفحه.
2
دریانبرد، غ.؛ فضلی، ح. و پرافکنده حقیقی، ف.، 1394. فراوانی نسبی ماهی سفید پره های صیادی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. سال 24، شماره 4، صفحات 145 تا 155.
3
عبدلی،ا. و نادری جلودار، م.، 1387. تنوع زیستی ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر. انتشارات علمی آبزیان. 242 صفحه.
4
فضلی، ح.، 1390. ارزیابی ذخایر ماهیان استخوانی در سواحل جنوبی دریای خزر (89ـ1386). مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 90 صفحه.
5
فضلی، ح.، 1395. پویایی جمعیت ماهیان استخوانی حوضه جنوبی دریای خزر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 72 صفحه.
6
فضلی، ح.، 1394. به کارگیری روش های مختلف طبقه بندی و خوشه بندی داده ها برای تجزیه و تحلیل صید ماهیان استخوانی در سواحل ایرانی دریای خزر. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 42 صفحه.
7
فضلی، ح.؛ دریانبرد، غ.؛ پورغلام، ر.؛ عبدالملکی، ش.؛ بندانی، غ.؛ پورغلامی، ا. و صفوی، س.ا.، c1391. بررسی کیفی وضعیت ذخایر ماهی سفید (Rutilus frisii kutum) در دریای خزر طی سال های 1390-1370. مجله علمی شیلات ایران. دوره 21، شماره 2، صفحات 53 تا 64.
8
فضلی، ح.؛ کر، د. و دریانبرد، غ.، a1391. مطالعه پراکنش زمانی و مکانی ماهی سفید (Rutilus kutum) در سواحل ایرانی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. دوره 23، شماره 1، صفحات 63 تا 75.
9
فضلی، ح.؛ کر، د.؛ توکلی، م.؛ دریانبرد، غ. و تقوی، ح.، b1391. مطالعه پراکنش زمانی و مکانی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) در سواحل ایرانی دریای خزر. مجله تحقیقات منابع طبیعی تجدید شونده. سال 3، شماره 4، صفحات 29 تا 37.
10
فضلی، ح.؛ پرافکنده حقیقی، ف.؛ کیمرام، ف. و دریانبرد، غ.، 1395. بررسی تغییرات مکانی و زمانی فراوانی و تنوع زیستی ماهیان استخوانی در پره های صیادی در سواحل ایرانی دریای خزر. مجله علوم و فنون شیلات. سال 5، شماره 3، صفحات 109 تا 120.
11
نادری جلودار، م. و عبدلی، ا.، 1383. اطلس ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 80 صفحه.
12
نادری جلودار، م.، 1392. بررسی عادات غذایی ماهیان استخوانی کف زی خوار در سواحل جنوبی دریای خزر (ماهی سفید، کلمه، کپور، کفال ماهیان). موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 51 صفحه.
13
Burely, J., 2002. Forest biological diversity: An overview. UnasylvaJournal. Vol. 53, No. 209, pp: 3-9.
14
CEP. 1998. National reports of the Caspian Sea countries (Azarbaijan, Iran, Kazakhistan, Russain Federation, Turkmanistan), Caspian Enviromental Programme.
15
Erzini, K., 1994. An empirical study of variability in length at age of marine fishes. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 10, pp: 17-41.
16
Fazli, H.; Ghaninejad, D.; Janbaz, A. and Daryanabard, G.H., 2008. Population ecology parameters and biomass of golden grey mullet (Liza aurata Risso, 1810) in Iranian waters of the Caspian Sea. Journal of Fisheries Researches. Vol. 93, pp: 222-228.
17
Hammer, Ø.; Harper, D.A.T. and Ryan, P.D., 2001. PAST: Paleontological Statistics Software Package for Education and Data Analysis. Palaeontologia Electronica. Vol. 4, No. 1, pp: 9.
18
Jenkins, M.A. and Parker, S., 1998. Composition and diversity of woody vegetation in silvicultural openings of southern Indian forests, Forest ecology and management. Vol. 109, pp: 57-74.
19
Kiabi, B.H.; Abdoli, A. and Naderi, M., 1999. Status of the fish fauna in the South Caspian Basin of Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 18, pp: 57-65.
20
Ludwig, J.A. and Reynolds, J.F., 1988. Statistical Ecology. John Wiley and Sons, Inc. 341 p.
21
Pielou, E.C., 1974. Population and communities ecology: principles and methods. London, Gordon a Breach Sciences. 424 p.
22
Wootton, R.J., 1990. Ecology of Teleost Fishes. Chapman and Hall, Upper Saddle River, New Jersey.
23
Worm, B.; Barbier, E.B.; Beaument, N.; Duffy J.E.; Folke, C.; Halpern, B.S.; Jackson, J.B.C.; Lotze, H.K.; Micheli F.; Palumbi, S.R.; Sala, E.; Selkoe, K.A.; Stachowicz, J. and Watson, R., 2006. Impacts of Biodiversity Loss on Ocean Ecosystem Services, Science. Vol. 314, pp: 787-790.
24
Zar, J.H., 2010. Biostatistical analysis. 4th edition. Prentice Hall, Upper Saddle River, New Jersey. 946 p.
25
ORIGINAL_ARTICLE
صید بر واحد تلاش صیادی فانوس ماهی (1890 Benthosema pterotum, Alcock) در تور ترال میان آبی در آب های شمال غرب دریای عمان
فانوس ماهیان یکی از ذخایر مهم و ارزشمند آبزیان در آبهای دریای عمان می باشند. در این بررسی، میزان صید و صید بر واحد تلاش صیادی (CPUE) فانوس ماهی گونه Benthosema pterotum در آب های شمال غربی دریای عمان (صیدگاه جاسک) مورد بررسی قرار گرفت. نمونه برداری در دو فصل بهار و تابستان 1395 با استفاده شناور ترالر پرشین تایگر مجهز به تور ترال میان آبی انجام گرفت. در مجموع 69295 کیلوگرم فانوس ماهی در طول دوره نمونه برداری و 141 عملیات ترال کشی شد. حداقل و حداکثر مقدار صید بر واحد تلاش در هر نوبت تورکشی ترال به ترتیب 13/33 و 1000 کیلوگرم بر ساعت به دست آمد. در فصل بهار بیش ترین میزان صید بر واحد تلاش در هر نوبت ترالکشی 1000 کیلوگرم بر ساعت و در فصل تابستان 33/333 کیلوگرم بر ساعت بهدست آمد. میانگین صید بر واحد تلاش (± خطای استاندارد) فانوس ماهی در فصل بهار و تابستان به ترتیب 24/91±241/27 و 7/03±88/57 کیلوگرم بر ساعت به دست آمد، که تفاوت معنی داری را نشان داد (0/05>P). میانگین صید بر واحد تلاش (± خطای استاندارد) در لایه های عمقی 220-200، 240-220 و 260-240 متر به ترتیب 25/47±171/96، 23/62±167/67 و 24/07±151/35 کیلوگرم بر ساعت به دست آمد که با افزایش عمق این میزان کاهش یافت، ولی اختلاف معنی داری را بین این اعماق نشان نداد (0/05<P). نتایج این تحقیق می تواند در بحث مدیریت صید و نحوه بهره برداری از ذخایر ارزشمند فانوس ماهیان در آب های دریای عمان مورد استفاده قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_63435_887244a7ab5713eac44d88cbfb668bfc.pdf
2017-12-22
263
268
صید بر واحد تلاش
فانوس ماهی
Benthosema pterotum
ترال میان آبی
شمال غرب دریای عمان
علیرضا
نظری بجگان
nazari02@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی و جوی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، صندوق پستی: 3995
AUTHOR
آرش
اکبرزاده
akbarzadeh@alumni.ut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی و جوی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، صندوق پستی: 3995
LEAD_AUTHOR
حسن
صالحی
hsalehi_ir@yahoo.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
احسان
کامرانی
ezas47@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی و جوی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، صندوق پستی: 3995
AUTHOR
مهران
یاسمی
yasemi_m@yahoo.com
5
موسسه آموزش عالی علمی کاربردی جهاد کشاورزی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، صندوق پستی: 1783-13145
AUTHOR
کیاالوندی، س.، 1390. تعیین صید به ازای واحد تلاش (CPUE) و ترکیب صید ضمنی در تورهای ترال میان آبی فانوس ماهیان در منطقه جاسک. پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات. دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 76 صفحه.
1
ولی نسب، ت. و حسینی شکرابی، س.پ.، 1390. الگوی رشد و تعیین سن روزانه فانوس ماهی Benthosema pterotum در دریای عمان. مجله علمی شیلات ایران. سال 20، شماره 1، صفحات 147 تا 160.
2
FAO., 2001. Trilateral workshop on lanternfish in the Gulf of Oman. FAO Publishing. Rome, Italy. 22 P.
3
Figueroa, D.E.; Diaz de Astarloa, J.M. and Martos, P., 1998. Mesopelagic fish distribution in the southwest Atlantic in relation to water masses. Journal of Deep-Sea Research. Vol. 45, pp: 317-332.
4
Gartner, J.V.Jr., 1993. Patterns of reproduction in the dominant lanternfish species of the eastern Gulf of Mexico. With a review of reproduction among tropical, subtropical Myctophidae. Bulletin Marine Scie. Vol. 52, pp: 721-750.
5
Gulland, J.A.,1983. Fish stock assessment: A manual of basic methods. Wiley. New York, USA. 236 P.
6
Haddon, M., 2011. Modelling and quantitative methods in fisheries. Chapman and Hall/CRC. Florida, USA. 465 P.
7
Hosseini-Shekarabi, S.P.; Valinassab, T.; Bystydzienska, Z. and Linkowski, T., 2015. Age and growth of Benthosema pterotum (Alcock, 1890) (Myctophidae) in the Oman Sea. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 31, pp: 51-56.
8
Ishihara, S. and Kubota, T., 1997. Food habits of the lantern fish Benthosema pterotum in the east China sea and the yellow sea. Nippon Suisan Gakkaishi. Vol. 63, pp: 522-530.
9
Johannesson, K. and Valinassab, T., 1994. Survey of mesopelagic fish resources within the Iranian exclusive zone of the Oman Sea. FAO Final Report. Rome, Italy. 81 P.
10
Karuppasamy, P.K.; George, S. and Menon, N.G., 2008. Length-weight relationship of Benthosema pterotum in the deep scattering layer of the eastern Arabian Sea. Indian Journal of Fisheries. Vol. 55, pp: 301-303.
11
King, M., 2007. Fisheries biology, assessment and management. Wiley-Blackwell Publishing. New Jersey, United States. 400 P.
12
Kinzer, J.; Bottger Schnack, R. and Schulze, K., 1993. Aspect of horizontal distribution and diet of myctophidae fish in the Arabian Sea with reference to the deep water oxygen deficiency. J of Deep Sea Research. Vol. 40, pp: 783-800.
13
Linkowski, T.B., 1996. Lunar rhythms of vertical migrations coded in otolith microstructure of North Atlantic lantern fishes, genus Hygophum (Myctophidae). Marine Biology. Vol. 124, pp: 495-508.
14
Nafpaktitis, B.G., 1982. Myctophidae. In Fischer, W. and Bianchi, G. FAO species identification sheets for fishery purposes. 3 rd Ed. FAO publication. Rome, Italy. pp: 1-8.
15
Nelson, J.S., 2006. Fishes of the world, 4 th Ed. John Wiley and Sons, Inc. New York, United States. 622 P.
16
Paxton, J.R. and Eschmeyer, W.N., 1995. Encyclopedia of Fishes. Academic Press. Massachusetts, United States. 240 P.
17
Poulsen, B.; Holm, P. and Mackenzie, B.R., 2007. A long term (1667-1860) perspective on impacts of fishing and environmental variability on fisheries for herring, eel, and whitefish in the Limfjord, Denmark. Fisheries Research. Vol. 87, pp: 181-195.
18
Reynolds, R.M., 1993. Physical oceanography of the Gulf, Strait of Hormuz, and the Gulf of Oman: results from the Mitchell Expedition. Marine Poll Bull. Vol. 27, pp: 35-60.
19
Rodriguez Grana, L. and Castro, L.R., 2003. Ichthyoplankton distribution off the Peninsula de Mejillones, Chile (23 S, 71 W), under variable hydrographic conditions during the austral summer and winter of the 1997 El Nino. Hydrobiologia. Vol. 501, pp: 59-73.
20
Rojas, P.M.; Escribano, R. and Marin, V.H., 2002. Fish larvae distribution off Mejillones Peninsula (northern Chile) during a coastal upwelling event in spring 1999: interactions with the cold upwelling plume. Fisheries Oceanography. Vol. 11, pp: 233-244.
21
Valinassab, T.; Pierce, G.J. and Johannesson, K., 2007. Lanternfish (Benthosema pterotum) resources as a target for commercial exploitation in the Oman Sea. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 23, pp: 573-577.
22
Wang, J.T. and Chen, C., 2001. A review of lantern fishes and their distributions around Taiwan and the Tungsha Island with notes on seventeen new records. Zoological Studies. Vol. 40, pp: 103-126.
23
ORIGINAL_ARTICLE
کاربرد مدل لاجیت در شناسایی عوامل موثر دربهره برداری غیرقانونی ذخایر ماهیان تجاری دریای خزر، استان گلستان
بهره برداری بی رویه آبزیان تجاری به خصوص ماهیان خاویاری به عنوان ارزشمندترین ماهیان دریای خزر، آن ها را در معرض خطر انقراض قرار داده است. این مطالعه با استفاده از روش پیمایش میدانی و به کمک ابزار پرسشنامه و مراجعه پرسشگر به مناطق فعالیت صیادان در استان گلستان انجام شد. داده های مورد نیاز با توزیع تعداد 172 پرسشنامه بین جامعه صیادان قانونی و غیرقانونی به دست آمد و پرسشنامه حاوی سوالات مرتبط با علل اجتماعی، اقتصادی، صیادی و حفاظت شیلاتی دخیل در وقوع بهره برداری غیرقانونی ذخایر بود. پس از تایید روایی و پایایی پرسشنامه ها، داده ها با استفاده از مدل لاجیت مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفتند. نتایج نشان داد که عوامل متعددی ازجمله: فاصله محل سکونت تا دریا، نوع شناور صیادی، نوع مالکیت صید، زمان و عمق صید تاثیر معنی داری در وقوع صید غیرقانونی داشتند. بهره برداران غیرقانونی در استان گلستان عمدتاً در اعماق کم به صید ماهیان خاویاری با استفاده از ادوات صیادی غیراستاندارد پرداخته و تلاش صیادی آن ها نیز در مقایسه با صیادان قانونی عمدتاً در طول شب رخ داد. به طورکلی، احتمال وقوع صید غیرقانونی در دریای خزر با مجموعه ای از عوامل اجتماعی، اقتصادی، حفاظتی و شیلاتی مرتبط است.
http://www.aejournal.ir/article_63447_fd2b58c3fa31e22e1bfc9a4ad11347a3.pdf
2017-12-22
269
276
بوم شناسی آبزیان
بهره برداری غیرقانونی
جنوب شرقی دریای خزر
ماهیان خاویاری
مدل لاجیت
مدیریت شیلات
سید مصطفی
عقیلی نژاد
aghilinejhad.1341@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
سعید
گرگین
sgorgin@gau.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
رامتین
جولایی
joolaie@gau.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
رسول
قربانی
rghorbani@gau.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
سید یوسف
پیغمبری
sypaighambari@gau.ac.ir
5
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
جهانگیر
محمدی
mohamadi.jahangir@gau.ac.ir
6
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
Agnew, D.J.; Pearce, J.; Pramod, G.; Peatman, T.; Watson, R.; Beddington, J.R. and Pitcher,
1
T.J., 2009. Estimating the worldwide extent of illegal fishing. PLoS One. Vol. 4, pp: e4570.
2
Belova, G., 2015. Illegal unreported and unregulated fishing in the Black Sea. International Conference Knowledge-based Organization. Vol. 2, pp: 408-412.
3
Christensen, J., 2016. Illegal, unreported and unregulated fishing in historical perspective. In: K. SchwerdtnerMáñez and B. Poulsen (eds). Perspectives on oceans past: a handbook of marine environmental history. Dordrecht: Springer. pp: 133-153.
4
CITES (Covention on International Trade in Endangered Species of Wild Fauna and Flora). 2004. Sturgeon and paddlefish. Earth Negotiations Bulletin. Vol. 24, pp: 5-6.
5
Clarke, R.V. and Cornish, D.B., 2001. Rational choice. In: Paternoster, Raymond, Bachman, Ronet (Eds.), Explaining Criminals and Crime. Roxbury, Los Angeles. 24 p.
6
Clarke, S., 2007. Illegal fishing in the exclusive economic zone of Japan. MRAG, Ltd., London, UK, http://www.mrag.co.uk/Documents/IUU_Japan.pdf.
7
Cochran, W.G., 1977. Sampling techniques (3rd ed.). New York: John Wiley & Sons. 448 p.
8
Cullen, F. and Agnew, R., 2006. Criminological Theory: Past to Present: Essential Readings, Oxford University Press.
9
Daliri, M.; Kamrani, E.; Jentoft, S. and Paighambari, S.Y., 2016. Why is illegal fishing occurring in the Persian Gulf? A case study from the Hormozgan province of Iran. Ocean and Coastal Management. Vol. 120, pp: 127-134.
10
FAO. 2011. FishStat-Fishery Statistics. FAO, Rome.
11
FAO. 2014. The state of world fisheries and aquaculture. FAO, Rome.
12
Gandiwa, E., 2011. Preliminary assessment of illegal hunting by communities adjacent to the northern Gonarezhou National Park, Zimbabwe. Tropical Conservation Science. Vol. 4, pp: 445-467.
13
IUCN (International Union for Conservation of
14
Nature). 2011. IUCN Red List of Threatened Species, available online at www.iucnredlist.org/apps/redlist/search.
15
Ivanov, V.P.; Vlasenko, A.D.; Khodorevskaya, R. and Raspopov, P., 1999. Contemporary status of the Caspian sturgeons (Acipenseridae) and the problem of conservation. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 15, pp: 106-113.
16
Kao, S.M., 2015. International actions against IUU fishing and the adoption of national plans of action. Ocean Development & International Law. Vol. 46, pp:2-16.
17
Lagutov, V. and Lagutov, V., 2008. The Ural River sturgeons: population dynamics, catch, reasons for decline and restoration strategies. In: Lagutov, V. (Ed.), Rescue of Sturgeon Species in the Ural River Basin. pp: 193-276.
18
Likert, R., 1932. A technique for the measurement of attitudes. Archives of Psychology. Vol. 140, pp: 1-55.
19
Nelder, J. and Wedderburn, R.W.M., 1972. Generalized linear models. Journal of the Royal Statistical Society.
20
Vol. 135, pp: 370-384.
21
Öztürk, B., 2013. Some remarks of illegal, unreported and unregulated fishing in Turkish part of the Black Sea, BlackSea/Mediterranean Environment. Vol. 19, pp: 256-267.
22
Petrossian, G.A. and Clarke, R.V., 2013. Explaining and controlling illegal commercial fishing: An Application of the CRAVED Theft Model. British Journal of Criminology. Vol. 54, No. 1, pp: 73-90.
23
Petrossian, G.A., 2015. Preventing illegal, unreported and unregulated (IUU) fishing: A situational approach. Biological Conservation. Vol. 189, pp: 39-48.
24
Pikitch, E.K.; Doukakis, P.; Lauck, L.; Chakrabarty, P. and Erickson, D.L., 2005. Status, trends and management of sturgeon and paddlefish fisheries. Fish and Fisheries. Vol. 6, pp: 233-265.
25
Pires, S.F. and Clarke, R.V., 2011. Sequential foraging, itinerant fences and parrot poaching in Bolivia. British Journal of Criminology. Vol. 51, pp: 314-335.
26
Pires, S.F. and Clarke, R.V., 2012. Are parrots CRAVED? An analysis of parrot poaching in Mexico. Journal of Research in Crime and Delinquency. Vol. 49, No. 1, pp: 122-146.
27
Pitcher, T.; Kalikoski, D.; Pramod, G. and Short, K., 2009. Not honoring the code. Nature. Vol. 457, No. 5,
28
pp: 658-659.
29
Pourkazemi, M., 2006. Caspian Sea sturgeon conservation and fisheries: past present and future. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, pp: 12-16.
30
Pramod, G. and Pitcher, T.J., 2006. An estimation of compliance of the fisheries of Namibia with article 7 (Fisheries Management) of the UN Code of Conduct for Responsible Fishing. University of British Columbia, Fisheries Center Research Reports.
31
Ruczinski, I.; Kooperberg, C. and LeBlanc, M., 2003. Logic regression. Journal of Computational and Graphical Statistics. Vol. 12, pp: 475-511.
32
Santos, R.A., 1999. Cronbach's alpha: A tool for assessing the reliability of scales. Journal of Extension. Vol. 37,
33
pp: 35-39.
34
Teh, L. and Teh, L., 2012. Determination of fishery and socio-economic effects of SIMCA on local fishing communities and evaluation of the effects of reserve protection on reef fish size and abundance. Malaysia, USAID Project Number: GCP LWA Award. LAG-A-00-99-00048-00.
35
Varkey, D.A.; Ainsworth, C.H.; Pitcher, T.J.; Goram, Y. and Sumaila, R., 2010. Illegal, unreported and unregulated fisheries catch in Raja Ampat regency, Eastern Indonesia. Marine Policy. Vol. 34, pp: 228-236.
36
Worm, B. and Branch, T.A., 2013. The future of fish. Trends in Ecology and Evolution. Vol. 27, No. 11,
37
pp: 594-599.
38
Wright, B.R.E.; Caspi, A.; Moffitt, T.E. and Paternoster, R., 2004. Does the perceived risk of punishment deter criminally prone individuals? Rational choice, self-control, and crime. Journal of Research in Crime and Delinquency. Vol. 41, No. 2, pp: 180-213.
39
Ye, Y. and Valbo-Jorgensen, J., 2012. Effects of IUU fishing and stock enhancement on and restoration strategies for the stellate sturgeon fishery in the Caspian Sea. Fisheries Research. Vol. 131, pp: 21- 29.
40
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تنوع گونه ای و تغییرات صید در واحد تلاش ماهی شوریده در تورهای گوشگیر کف دریای عمان سواحل سیستان و بلوچستان
این تحقیق با هدف ترکیب گونهای، فراوانی طولی و صید در واحد تلاش گونههای صید شده در تورهای گوشگیر مونوفیلامنت ویژه ماهی شوریده انجام شد. عملیات نمونه برداری طی 20 بار دریاوری در منطقه پسابندر چابهار در فصول پاییز و زمستان و بهار 1393 و توسط قایق صیادی (مجهز به 4 طاقه تور به طول 360 متر، ارتفاع آویخته تور 4/4 متر، اندازه چشمه کشیده 73 میلیمتر) و در اعماق 8-4 متر صورت پذیرفت. در پایان 20 فقره تور اندازی، 1157 قطعه ماهی و سخت پوست متعلق به 19 خانواده و 19 گونه در دوره مطالعه ثبت شد. بیش ترین فراوانی متعلق به ماهی شوریده (29/1 درصد) بود. بعد از آن بهترتیب ماهی کیجار بزرگ (16/98 درصد)، گربه ماهی بزرگ (7/45 درصد)، شینگ ماهی (6/32 درصد) سنگسر معمولی (6/23 درصد)، گوازیم دم رشتهای (4/41 درصد) و سایر آبزیان روی هم رفته (29/5 درصد) از ترکیب صید را به خود اختصاص دادند. هم چنین نتایج تحقیق نشان داد که در فصل زمستان ماهی شوریده از فراوانی بیش تری نسبت به فصل پاییز برخوردار بود. دامنه طولی ماهی شوریده صید شده در کل دوره نمونه برداری بین 50 – 20/1 سانتیمتر و بیش ترین فراوانی (33/76 درصد) در کلاسه طولی 40 – 35 سانتیمتر بود.هم چنین در این بررسی مشاهده شد که 58/82 درصد ماهیهای شوریده صید شده کوچک تر از اندازه 50 Lmاین گونه (40 سانتیمتر) در منطقه پسابندر و 41/18 درصد ماهیها بالای این اندازه بودند. صید بهازای واحد تلاش صیادی ماهی شوریده در کل دوره مطالعه 2994/29 گرم بر طاقه روز به دست آمد. بیش ترین و کم ترین CPUE ماهی شوریده بهترتیب مربوط به ماه اسفند به میزان 6979 و مهر به میزان 1142 گرم بر طاقه روز بود. هم چنین میزان صید بهازای واحد تلاش برای گونههای کیجار بزرگ، گربه ماهی ، سنگسر، پنج زاری ماهی مخطط و گوازیم دم رشتهای بهترتیب 1161/94، 495/69، 418/81، 188/68، 160/69 گرم بر طاقه روز به دست آمد. با توجه به نتایج حاصل، افزایش اندازه چشمه تور برای حفاظت از ذخایر پیشنهاد میگردد.
http://www.aejournal.ir/article_63459_fd4795f852c56752c6aa84325f816a9b.pdf
2017-12-22
277
288
ماهی شوریده
صید بهازای واحد تلاش
فراوانی طولی
پسابندر
یوسف
پیغمبری
sypaighambari@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
امام بخش
سابکزیی
sabokzehi.e@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
محمد
صابری
m_saberi90@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
آژیر، م.، 1384. گزارش نهایی پروژه برخی از خصوصیات زیستی سه گونه شوریده، حلوا سیاه و سنگسر کاکان به منظور بهینه سازی فصل صید در دریای عمان. 108 صفحه.
1
آژیر، م.، 1387.بررسی برخی از خصوصیات زیستی ماهی شوریده به منظور بهینه سازی فصل صید در دریای عمان. مجله علمی شیلات ایران. شماره 1، صفحات 1 تا 10.
2
اسکندری، غ.؛سواری. ا.، کوچنین، پ. و تقوی، ا.، 1379. بررسی بیولوژی ماهی شوریده در استان خوزستان. مجله علوم و فنون کشاورزی. شماره 2، صفحات 15 تا 25.
3
اسکندری، غ.؛ سواری، ا.؛ کوچنین، پ. و تقوی، ا.، 1391. روند ساختار طولی صید، ضرایب مرگ و میر و بهره برداری ماهی شوریده در 10 سال گذشته در شمال غربی خلیج فارس. مجله علوم و فنون کشاورزی. شماره 3، صفحات 55 تا 63.
4
امامی، ل.، 1386. محاسبه پارامترهای رشد و ارزیابی ذخایر ماهی شوریده در سواحل خوزستان، پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه آزاد اسلامی اهواز. 177صفحه.
5
تقوی مطلق، ا.؛ ابطحی، ب. و حسینی، ه.، 1380. تخمین پارامترهای رشد ماهی شوریده (Otolithes ruber) در آبهای استان های بوشهر، هرمزگان و سیستان و بلوچستان. مجله علمی شیلات ایران. شماره 4، صفحات 77 تا 86.
6
دادگر، ش.؛ کیمرام، ف. و ولی نسب، ت.، 1390. تأثیر ماهیگیری بر اکوسیستم و جوامع دریایی. انتشارات مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 417 صفحه.
7
سازمان شیلات ایران. 1391. سالنامه آماری سازمان شیلات ایران 1389ـ1379. سازمان شیلات ایران، معاونت برنامه ریزی و توسعه مدیریت، دفتر برنامه و بودجه. 60 صفحه.
8
صابری. م.، 1392. بررسی ترکیب صید، فراوانی طولی و وزنی و تعیین CPUE (صید بهازای واحد تلاش) در تور گوشگیر کف ماهی شوریده (Otolithes ruber) آبهای ساحلی منطقه جاسک.پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 91 صفحه.
9
صادقی،ن.، 1380. ویژگی های زیستی و ریخت شناسی ماهیان جنوب ایران. انتشارات نقش مهر. 440 صفحه.
10
ضیائیان نوربخش، ه.، 1391. تعیین پروفیل اسیدهای چرب و ترکیبات غذایی موجود در گوشت ماهی شوریده. علوم غذایی و تغذیه. شماره 4، صفحات 77 تا 84.
11
کمالی، ع.؛دهقانی، ر.؛ بهزادی،س.وجلالی، ک.، 1387. بررسی برخی از ویژگی های زیستی سنگسر معمولی، شوریده و میش ماهی در آب های استان هرمزگان. موسسه تحقیقات شیلات. گزارش نهایی. صفحات 40 تا 53.
12
محمدخانی، ح. و یلقی، ح.، 1389. ارزیابی ذخایر ماهی شوریده در سواحل ایرانی دریای عمان. مجله شیلات. شماره 1، صفحات 85 تا 94.
13
نیامیمندی، ن.، 1378. تعیین و بررسی پارامترهای پویایی جمعیت و دینامیک تولیدمثل و مرگ و میر و میزان برداشت ماهی شوریده. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده علوم و فنون دریایی. 114 صفحه.
14
نیک پی، م.، 1377. بررسی و بیولوژی ماهی حلوا سیاه و شوریده در سواحل خوزستان در سال 1377. مجله علوم و فنون دریایی. شماره 3، صفحات 23 تا 33.
15
Bianchi, G., 1985. Species Identification Sheets For Fisheries Purposes, Field Guide to Commercial Marine and Brackish Species of Pakistan, FAO, Rome, Italy. 263 p.
16
Capietto, A.; Escalle, L. and Chavance, P., 2014. Mortality of marine megafauna induced by fisheries: insights from the whale shark, the world’s largest fish. Biol Conserv. Vol. 174, pp: 147-151.
17
Dadzie, S., 2007. Vitellogenesis, oocyte maturation pattern, spawning rhythm and spawning frequency in Otolithes ruber (Schneider, 1801) (Sciaenidae) in the Kuwaiti waters of the Persian Gulf. Marine Science. Vol. 71, pp: 239-248.
18
Froese, R. and Pauly, D., 2014. FishBase. World Wide Web electronic publication. http://www.fishbase.org, (last accessed: 3 Jan 2014).
19
Kedidi, S.M.; Fita, N.I. and Abdulhadi, A., 1993. Population dynamics of the king seerfish Scomberomorus commerson, along the In Saudi Arabian Gulf coast. Proceedings of the Expert Consultation on Indian Ocean Tunas. Vol. 312, pp: 76-87.
20
Sparre, P. and Venema, S.C., 1992. Introduction to tropical fish stock assessment. Part I Manual. FAO Fisheries Technical Paper No. 306.1, Rev. 1.FAO, Rome. 376 p.
21
Sturges, H., 1926. The choice of a class-interval. J. Amer. Statist. Assoc. Vol. 21, pp: 65-66.
22
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه تنوع گونهای پارازیتوئیدهای مزارع برنج شمال ایران با تأکید بر پارازیتوئیدهای کرم ساقهخوار برنج
پارازیتوئیدها نقش بسیار مهمی در تعادل زنجیرههای اکوسیستمهای طبیعی و زراعی ایفاء میکنند. مزارع برنج یکی از اکوسیستمهای منحصر به فرد است که دو شرایط آبی و خشکی را به طور توأم دارا میباشد و لذا فون بسیار متنوعی از بندپایان در این اکوسیستم فعالیت دارند. در این پژوهش تنوع گونهای پارازیتوئیدهای مزارع برنج در برخی مناطق استانهای گیلان و مازندران مورد بررسی قرار گرفت. براساس نتایج این پژوهش یازده گونه پارازیتوئید از راسته دوبالان (Diptera) و سی و چهار گونه پارازیتوئید از راسته بال غشائیان (Hymenoptera) از مزارع برنج و مناطق اطراف آن جمعآوری شدند. از میان پارازیتوئیدهای جمعآوری شده، از راسته دوبالان (Diptera)، یک گونه از خانواده Phoridae، سه گونه از خانواده Sarcophagidae و چهار گونه از خانواده Tachinidae، و از راسته بالغشاییان (Hymenoptera)، سه گونه از خانواده Chalcididae، هشت گونه از خانواده Braconidae، بیست و یک گونه از خانواده Ichneumonidae و دو گونه از خانواده Trichogrammatidae شناسایی گردیدند. دو گونه زنبور شامل Coelichneumon dorsosignatus (Berthoumieu, 1894) (Ichneumonidae) و Antrocephalus mitys (Walker, 1846) (Chalcididae) گزارشهای جدید برای فون ایران محسوب میگردند.
http://www.aejournal.ir/article_63471_893da0d0e2a4e605f18a7a7999eb0ee9.pdf
2017-12-22
289
298
تنوع گونهای
پارازیتوئیدها
مزارع برنج
گیلان
مازندران
حسن
قهاری
hghahari@yahoo.com
1
گروه گیاه پزشکی، واحد یادگار امام خمینی (ره)، دانشگاه آزاد اسلامی شهر ری، ایران
LEAD_AUTHOR
ابراهیمی، ا.، 1378. مطالعه مرفولوژیک و آنزیماتیک گونههای جنس Trichogramma Westwood در ایران. رساله دکتری حشرهشناسی دانشگاه تربیت مدرس. 149 صفحه.
1
رضوانی، ن. و شاه حسینی، ج.، 1355. بررسی اکولوژی آفت ساقه خوار برنج در مازندران شرقی.نشریه مؤسسه بررسی آفات و بیماریهای گیاهی. نشریه شماره 43، صفحات 1 تا 38.
2
شجاعی، م.، 1377. حشرهشناسی (اتولژی، زندگی اجتماعی، دشمنان طبیعی)، جلد سوم. انتشارات دانشگاه تهران. 550 صفحه.
3
عمواقلی طبری، م. و قهاری، ح.، 1387. تأثیر کشت دوم روی انبوهی جمعیت کرم ساقهخوار برنج Chilo suppressalis; Lepidoptera: Crambidae. مجله علمی کشاورزی (دانشگاه شهید چمران اهواز)، جلد 31، شماره 2، صفحات 25 تا 36.
4
قهاری، ح.؛ طبری، م.؛ استوان، ه.؛ ایمانی، س. و پروانک، ک.، 1388. گیاهان میزبان کرم ساقهخوار برنج Chilo suppressalis Walker (Lepidoptera: Pyralidae) و شناسایی گونههای Chilo spp. در استان مازندران. مجله دانش نوین کشاورزی (دانشگاه آزاد اسلامی واحد میانه). جلد 5، شماره 17، صفحات 65 تا 74.
5
Achterberg, C. van and Polaszek, A., 1996. The parasites of cereal stem borers (Lepidoptera: Cossidae, Crambidae, Noctuidae, Pyralidae) in Africa, belonging to the family Braconidae (Hymenoptera: Ichneumonoidea). Zoologische Verhandelingen. Vol. 304,pp: 1-123.
6
Bonhof, M.L.; Overholt, W.A.; Van Huis, A. and Polaszek, A., 1997. Natural enemies of cereal stemborers in East Africa: A review. Insect Science Applicata.Vol. 17,No. 1, pp: 19-35.
7
Çoruh, S.; Kolarov, J. and Çoruh, I., 2014. Probles microcephalus (Gravenhorst, 1829) a new record for the Turkish fauna (Hymenoptera: Ichneumonidae: Tersilochinae). Munis Entomology and Zoology.Vol. 9, No. 1, pp: 451-456.
8
Dahlan, A.N. and Gordh, G., 1996. Development of Trichogramma australicum Girault (Hymenoptera: Trichogrammatidae) on Helicoverpa armigera (Hübner) eggs (Lepidoptera: Noctuidae). Australian Journal of Entomology. Vol. 35, pp: 337-344.
9
Dwumfour,E.F.;Owino,J.andAndere,M., 1991. Discovery capacity by parasitoids and predators of Chilo partellus eggs. ICIPE 19th Annual Report. pp: 23-24.
10
Foerster, L.A. and Avanci, M.R.F., 1999. Egg parasitoids of Anticarsia gemmatalis Hübner (Lepidopera: Noctuidae) in soybeans. Annalsof theEntomological SocietyofBrazil. Vol. 28, pp: 545-548.
11
Ghahari, H. and Disney, H., 2007. Megaselia scalaris (Loew) (Diptera: Phoridae) invading insect cultures in Iran. Entomologist's Monthly Magazine. Vol. 143, 164 p.
12
Ghahari, H.; Hayat, R.; Lavigne, R.J. and Ostovan, H., 2007. Robber flies (Diptera: Asilidae) of Iranian rice fields and surrounding grasslands. Linzer biologische Beiträge.Vol. 39, No. 2, pp: 919-928.
13
Ghahari, H. and Tabari, M., 2008. Predator beetles (Coleoptera) and their population fluctuation in rice fields of Mazandaran. Journal of Agriculture. Vol. 10, No. 2, pp: 147-159 [in Persian with English Summary].
14
Ghahari, H.; Hayat, R.; Chao, C.M. and Ostovan, H., 2008a. A contribution to the dipteran parasitoids and predators in the Iranian cotton fields and surrounding grasslands. Munis Entomology and Zoology.Vol. 3, No. 2, pp: 699-706.
15
Ghahari, H., Ostovan, H., Kamali, K. and Tabari, M., 2008b. Arthropod predators of rice fields in central parts of Mazandaran. Journal of Agricultural Sciences. Vol. 14, No. 1, pp: 63-74 [in Persian with English Summary].
16
Ghahari, H.; Hayat, R.; Tabari, M. and Ostovan, H., 2008c. Hover flies (Diptera: Syrphidae) from Rice fields and around grasslands of Northern Iran. Munis Entomology and Zoology. Vol. 3, No. 1, pp: 275-284.
17
Ghahari, H.; Cherot, F.; Ostovan, H. and Sakenin, H., 2008d. Heteroptera from rice fields and surrounding grasslands of northern Iran (Insecta), with special emphasis on predator species. Journal of Entomological Research Society. Vol. 10, No. 1, pp: 13-25.
18
Ghahari, H. and Marusik, Y.M., 2009. New data on spider fauna of Iran (Araneae). Turkish Journal of Arachnology.Vol. 2, No. 3, pp: 1-8.
19
Ghahari, H.; Tabari, M.; Sakenin, M.; Ostovan, H. and Imani, S., 2009a. Odonata (Insecta) from northern Iran, with comments on their presence in rice fields. Munis Entomology and Zoology. Vol.4: pp: 148-154.
20
Ghahari, H.; Ostovan, H. and Tabari, M., 2009b. Species diversity and population fluctuation of Heteroptera predators in rice fields of Mazandaran province, northern Iran. Journal of Plant Protection.Vol. 1, No. 1, pp: 27-41 in Persian, English summary.
21
Ghahari, H.; Fischer, M.; Çetin Erdoğan, Ö.; Tabari, M.; Ostovan, H. and Beyarslan, A., 2009c. A contribution to Braconidae (Hymenoptera) from rice fields and surrounding grasslands of northern Iran. Munis Entomology and Zoology.Vol. 4, pp: 432-435.
22
Ghahari, H.; Collingwood, C.A.; Tabari, M. and Ostovan, H., 2009d. Faunistic notes on Formicidae (Insecta: Hymenoptera) of rice fields and surrounding grasslands of northern Iran. Munis Entomology and Zoology.Vol.4, No. 1, pp: 184-189.
23
Ghahari, H.; Jedryczkowski, W.B.; Kesdek, M.; Ostovan, H. and Tabari, M., 2009e. Ground beetles (Coleoptera: Carabidae) from rice fields and surrounding grasslands of Northern Iran. Journal of Biological Control.Vol. 23, No. 2, pp: 105-109.
24
Ghahari, H.; Anlas, S.; Sakenin, H.; Ostovan, H. and Tabari, M., 2009f. A contribution to the rove beetles (Coleoptera: Staphylinoidea: Staphylinidae) of Iranian rice fields and surrounding grasslands. Linzer biologische Beiträge. Vol. 41/2, pp: 1959-1968.
25
Ghahari, H.; Satar, A.; Anderle, F.; Tabari, M.; Havaskary, M. and Ostovan, H., 2010. Lacewings (Insecta: Neuroptera) of Iranian rice fields and surrounding grasslands. Munis Entomology and Zoology.Vol. 5, No. 1, pp: 65-72.
26
Ghahari, H.; Sakenin, H.; Ostovan, H. and Tabari, M., 2015. A study of Coleoptera (Insecta) from the rice fields and surrounding grasslands of northern Iran. Entomofauna.Vol. 36, pp: 529-536.
27
Godfray, H.C.J., 1994. Parasitoids, behavioral and evolutionary ecology. Princeton University Press. 473 p.
28
Grenier, S.; Greany, P. and Cohen, A.C., 1994. Potential for mass release of insect parasitoids and predators through development of artificial culture techniques. In: Pest management in the subtropics: Biological control a Florida perspective, Rosen, D., Bennett, F.D. and Capinera, J.L. (eds). Intercept Publication. Chap. 10, pp: 181-205.
29
Huffaker, C.B. and Messengaer, P.S., 1976. Theory and practice of biological control. Academic Press, 745 pp.
30
Humala, A. and Reshchinkov, A., 2014. Ichneumonidae (Hymenoptera) species new to the fauna of Norway. Biodiversity Data Journal. Vol. 2, pp: 1-26.
31
Kalyebi, A.; Sithanantham, S.; Overholt, W.A.; Hassan, S.A. and Mueke, J.M., 2005. Parasitism, longevity and progeny production of 6 indigenous Kenyan trichogrammatid egg parasitoids (Hymenoptera: Trichogrammatidae) at different temperature and relative humidity regimes. Biocontrol Science and Technology.Vol. 15, No. 3, pp: 255-270.
32
Kfir, R.; Overholt, W.A.; Khan, Z. and Polaszek, A., 2002. Biology and management of economically important Lepidopteran cereal stem borers in Africa. Annual Review of Entomology.Vol. 47, pp: 701-31.
33
Kogan, M., 1998. Integrated pest management: historical perspectives and contemporary developments. Annual Review of Entomology.Vol. 43, pp: 243-270.
34
Li, Li.Y., 1994. Worldwide use of Trichogramma for biological control on different crops: A survey. pp. 37-53. In: Wajnberg, E. and Hassan, S.A. (eds), Biological control with egg parasitoids. C.A.B. International, xiv. 286 p.
35
Mochia, M.B.; Ngi Song, A.J.; Overholt, W.A. and Stouthamer, R., 2002. Variation in encapsulation sensitivity of Cotesia sesamiae biotypes to Busseola fusca. Entomological Experimentalis Applicata.Vol. 105, pp: 111-118.
36
Mohyuddin, A.I., 1990. Biological control of Chilo spp. in maize, sorghum and millet. Insect Science Applicata.Vol. 11, No. 4/5, pp: 721-732.
37
Omwega C.O.; Kimani S.W.; Overholt W.A and Ogol, C.K.P.O., 1995. Evidence of the establishment of Cotesia flavipes (Hymenoptera: Bracondiae) in continental Africa. Bulletin Entomological Research. Vol.85, pp: 525-530.
38
Overholt, W.A., 1998. Biological control. In: Polaszek, A. (ed.), African cereal stem borers: Economic importance, taxonomy, natural enemies and control. Wallingford, UK: CABI. 530 p.
39
Overholt, W.A.; Ngi Song, A.J.; Kimani, S.K.; Mbapila, J.; Lammers, P. and Kioko, E., 1994. Ecological consideration of the introductions of Cotesia flavipes Cameron (Hym.: Braconidae) for biological control of Chilo partellus (Swinhoe) (Lep.: Pyralidae) in Africa. Biocontrol News Inf.Vol. 15, pp: 19-24.
40
Overholt, W.A.; Conlog, D.E.; Kfir, R.; Schulthess, F. and Setamou, M., 2003. Biological control of gramineous Lepidopteran stemborers in sub-Saharan Africa, pp. 131-144. In: Neuenschwander, P., Borgemeiser, C. and Langewald, J. (eds), Biological control in IPM system in Africa. CAB International. 448 p.
41
Parra, J.R.P. and Zucchi, R.A., 2004. Trichogramma in Brazil: Feasibility of Use after Twenty Years of Research. Neotropical Entomology. Vol. 33, No. 3, pp: 271-281.
42
Pinto, J.D. 1999. Systematics of the North American species of Trichogramma Westwood (Hymenoptera: Trichogrammatidae). Memoirs Entomological Society of Washington. Vol. 22, pp: 1-287.
43
Polaszek, A., 1995. Cereal stem borers in Africa: taxonomy and natural enemies. Handbooks for training course held at ICIPE Nairobi. pp: 15-28.
44
Polaszek, A., 1998. African cereal stem borers: Economic importance, taxonomy, natural enemies and control. Wallingford, UK: CABI. 530 p.
45
Potting, R.P.J.; Overholt, W.A.; Danso, F.O. Takasu, K., 1997. Foraging behaviour and life history of the stemborer parasitoid Cotesia flavipes (Hymenoptera: Braconidae). Journal of Insect Behaviour.Vol. 10, pp: 13-29.
46
Tumrasvin, W.; Sucharit S. and Vutikes, S., 1997. Studies on the life history of Megaselia scalaris (Loew) in Thailand. Southeast Asian J. Trop. Med. Public Health.Vol. 8, pp: 74-76.
47
Wajnberg, E. and Hassan, S.A., 1994. Biological control with egg parasitoids. CAB International. 286 p.
48
Zhou, G.; Overholt, W.A. and Kimani-Njogu, S.W., 2003. Species richness and parasitism in an assemblage of parasitoids attacking maize stemborers in coastal Kenya. Ecological Entomology.Vol. 28, pp: 109-118.
49
Zucchi, R.A. and Monteiro, R.C., 1997. O gênero Trichogramma na América do Sul, pp. 41-66. In: Parra, J.R.P. & Zucchi, R.A. (eds.), Trichogramma e o controle biológico aplicado. Piracicaba, FEALQ. 324 p.
50
ORIGINAL_ARTICLE
گزارش 3 گونه جدید از راسته Odonata در استان مازندران
راسته Odonata یکی از قدیمی ترین حشرات بال داربوده که در برگیرنده سه زیر راسته به نام هایZygoptera ،Anisoptera و Anisozygoptera می باشد. این راسته با ٦٥٠٠ گونه نقش مهمی در کنترل بیولوژیک آفات و آفت حشرات ایفاء می کند. به منظور بررسی فون راستة Odonata در استان مازندران نمونهبرداری به صورت تصادفی به وسیله تور حشره گیری از ١١ ایستگاه در موقعیتهای جغرافیایی مختلف طی ماه های اردیبهشت تا اواسط شهریورسال ١۳۹٠ انجام گرفت. نمونه ها به وسیله استات اتیل کشته شده و در آزمایشگاه بیوسیستماتیک دانشگاه شهید بهشتی توسط کلید شناسایی دامونت مورد شناسایی قرار گرفتند.١٤گونه متعلق به 10 جنس، 7 خانواده و دو زیر راسته مورد شناسایی قرار گرفت. از این بین سه گونه به نام های
(Orthetrum brunnum (B.de Fonscolombe,1837
(Pantala flavescens (Fabricius,1798
و (Sympetrum fonscolombei (Selys,1837 متعلق به سه جنس از خانواده Libellulidae و زیر راسته Anisoptera برای اولین بار از استان مازندران شناسایی و معرفی شدند. تمامی گونه های شناسایی شده توسط پروفسور Dumont ازکشور بلژیک مورد تأیید قرار گرفت.
http://www.aejournal.ir/article_63476_c4da070fd773b951f3d9c0572dc76aef.pdf
2017-12-22
299
304
فون
Odonata
استان مازندران
تور حشره گیری
شیما
جعفری زندیه
shimazandie@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی تهران شمال، ایران
AUTHOR
شاهرخ
پاشایی راد
sp2191@gmail.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم و فناوری های زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
Ghahari, H.; TorabiT M.; Sakenin, H.; Ostovan, H. and. Imani, S., 2009. Odonata (Insecta) from northern Iran, with comments on their presence in rice filed. Mun. Ent. Zool. Vol. 4, No. 1, pp: 148-154.
1
Atten borough, D., 2005. Life in the under growth. First published in 2005 by BBC Books.
2
Berger, C.,2004. Wild guide. Dragonflies.
3
Borror, D.J.; Triplehorn, G.A. and Johnson, N.F., 1989. An Introduction to the study of insects (6thed.), Saunders College Publishing, Philadelphia. 875 p.
4
Corbet, P.H. and Brooks, S., 2008. Dragonflies.
5
Dumont, H.J., 1991. Fauna Palaestina Insecta- Odanata of the levant.
6
Heidari, H. and Dumont, H.J., 2002. An annotated check list of the Odanata of Iran.Zoology in the middle East. Vol. 26, pp: 151-156.
7
Heijden, A., 2005. The anatomy of Odonata. Htt://www.libellen.nl/europa/abtana.html
8
Kalkman, V.J., 2006. Key to the dragonflies of Turkey including species known from Greece, Bulgaria, Lebanon, Syria, The Trans- Caucasus and Iran, Brachytron. Vol. 10, No. 1, pp: 3-82.
9
Khan, Z.R.; Listinger, J.A.; Barrion, A.T.; Villanueva, F.F.D.; Fernandez, N.J. and Taylor, L.D., 991. World bibliography of rice stem borers 1974-1990. International Rice Research Institute and International Center of Insect Physiology and Ecology.
10
Norling, U. and Sahlen, G., 1997. Odanata, dragonflies and damselflies, pp. 13-65. In: A. N. Nilsson (ed.), Aquatic insects of North Europe- Ataxonomic handbook, Vol. 2, Apollo Books, Sterstrup, Denmark.
11
Papazian, M., 1994. Predation and Odanata.Entomologiste. Vol. 50, pp: 297-303.
12
Pilgrim, E. and Vondohlen, C., 2008. Phylogeny of the Sympetrinae (Odonata: Libellulidae): further evidence of the homoplasious nature of wingvenation. Department of Biology, Utah State University, Logan, UT 84322, U.S.A. Systematic Entomology. Vol. 33, pp: 159-174
13
Sadeghi, S. and Dumont, H.J., 2004. First record of LibellulafulvaponticaSelys, 1887 (Odonata, Anisoptera) from Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 32, pp: 116-117.
14
Sadeghi, A. and Mohammadizadeh, J., 2009. Additions to the Odonata fauna of Iran. Iranian Journal of Science and Technology, Trans. Vol. 33, pp: 3-4.
15
Salur, A. and Özsarac, O., 2004. Additional notes on the Odonata fauna of Cicekdagi (Kirsehir) Turkey.G.U. Journal of science. Vol. 17, No. 1, pp: 11-19.
16
Stokes, D.L., 2002. Beginner's guide to dragonflies.
17
Trueman, J. and Rowe, R., 2001. Odonata.Dragonflies and damselflies. Version 01 Januarylou1.
18
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی فونستیک روزپرک های پارک ملی خجیر (استان تهران - ایران)
مطالعه حاضر در راستای تکمیل فون پروانه های شرق استان تهران صورت گرفت، 6 منطقه که براساس ارتفاع با هم اختلاف داشتند در پارک ملی خجیر انتخاب شد. نمونه برداری در طبیعت به طور هفتگی به صورت تصادفی از اسفند 1394 تا مرداد 1395 انجام شد. نتایج این مطالعه منجر به شناسایی 35 گونه از 26 جنس،10 زیرخانواده، 5 خانواده و 2 بالاخانواده در این منطقه مطالعاتی گردید. از میان گونه های شناسایی شده، ایستگاه باغ شاد با 28 گونه و ایستگاه حاشیه سد ماملو با 7 گونه به ترتیب بیش ترین و کم ترین تعداد گونه ها را به خود اختصاص داده اند، از طرفی ایستگاه باغ شاد با 177 نمونه و ایستگاه حاشیه سد ماملو با 34 نمونه به ترتیب بیش ترین و کم ترین فراوانی را داشتند. فراوانترین گونه ها در محدوده ایستگاه های مطالعاتی شامل Coenonympha saadi، Hyponephele lupinus، Pontia (daplidice) edusa edusa و Pieris rapae بودند. پراکندگی و جمعیت پروانه های شناسایی شده در اردیبهشت ماه بالاتر بود که نشان دهنده شرایط مطلوب تر زیستی در این زمان می باشد. روزپرک های خجیر در منطقه باغ شاد به طور معنی داری بیش تر بودند. براساس نتایج به دست آمده مشاهده گردید که گونه Coenonympha saadi در اردیبهشت ماه در ایستگاه بند انجیر و گونه Hyponephele lupinus در مرداد ماه در ایستگاه باغ شاد دارای اختلاف معنی دار می باشند (0/05>P) و نمونه های دیگر فاقد اختلاف معنی دار میباشند. گونه Glaucopsyche safidensis که در منابع فارسی وجود نداشت در این مطالعه مشاهده شد وگونه Eogenes alcides برای اولین بار در شهر تهران گزارش شد.
http://www.aejournal.ir/article_63494_7c48293a1e74e8f0839d095099f24f5c.pdf
2017-12-22
305
314
فونستیک
بال پولک داران
روزپرک
پارک ملی خجیر
شرق استان تهران
ایران
طناز
ایرجی
tannazz.1990@yahoo.com
1
واحد علوم پزشکی تهران، دانشگاه آزاداسلامی ، تهران، ایران
AUTHOR
بتول
قربانی یکتا
yekta@iautmu.ac.ir
2
واحد علوم پزشکی تهران، دانشگاه آزاداسلامی ، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
خیراندیش، آ.؛ احمدزاده، ف. و نادری، ع.، 1389. بررسی پروانه های روزپرواز(Rhopalocera) زیر آب سوادکوه. مجله زیست شناسی ایران. شماره 23، صفحات 752 تا 758.
1
رامون، م.، 1391. بررسی قسمتی از فون پروان ههای روز پرواز پارک ملی و منطقه حفاظت شده تندوره در شهرستان درگز استان خراسان رضوی. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه فردوسی مشهد. 120 صفحه.
2
سلاطین، ر.، 1390. بررسی فونستیک پروانه های زیرخانواده (Lep: Nymphalidae) Heliconiinae در البرز مرکزی پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه آزاد واحد تهران شمال. 200 صفحه.
3
شجاعی، م.، 1387. حشره شناسی (مورفولوژی و فیزیولوژی), تهران, انتشارات دانشگاه تهران. 570 صفحه.
4
گلستانه، ر.؛ عسکری، ح.؛ گلدسته، ش.؛ مظفری، ا. و فرار، ن.، 1388. مطالعه چرخه زندگی پروانه برگ خوار استبرق Danaus chrysippus در استان بوشهر. فصلنامه تخصصی تحقیقات حشره شناسی. شماره 1، صفحات 1 تا 11.
5
میرکریمی، ا.، 1387.پروانههای مهم ایران: راسته بال پولکی ها تهران. انتشارات سازمان جهاد کشاورزی استان قزوین. 422 صفحه.
6
نادری، ع.، 1391. راهنمای میدانی پروانه های ایران. تهران, انتشارات ایرانشناسی. 272 صفحه.
7
نظری، و.، 1382. پروانه های ایران, تهران. انتشارات دایره سبز. 568 صفحه.
8
Baytas, A., 2007. A field guide to the butterflies of Turkey. NTV Yayınları.
9
Bienert, T., 1869. Lepidopterologische Ergebnisse einer Reise in Persien in den jahren 1858und 1869. [Dissertation]. Leipzig, Druck C.W. Vollrath. pp: 8-56.
10
Capinera, J., 2008. Butterflies and moths. Encyclopedia of Entomology. 4 (2nd ed.). Springer. pp: 626-672.
11
Carbonell, F., 1994. Le comlexe d’Agrodiaetus poseidon Herrich-schaffer (1851) en Turquie etau Liban. Description d’une nouvelle sous-espece d’A. Theresiae (Lepidoptera: Lycaenidae). LinneanaBelgica. Vol. 15, No. 6, pp: 291-302.
12
Carbonell, F. and Naderi, A., 2006. Melanargia sadjadii n. sp., du nord de l'Iran (Lepidoptera, Nymphalidae). Bulletin de la Société entomologique de France. Vol. 111, pp: 465-468.
13
Naderi, A.: Tshikolovets, V.V, and Eckweiler, W., 2014. The butterflies of Iran and Iraq, Tshikolovets Publications.
14
Forster, W., 1960. Agrodiaetus rjabovi sp. Nov. Ent. Zeit. Vol. 70, No. 14, pp: 157-158.
15
Lelo, S., 2007. Contribution to knowledge of the fauna of butterflies in Bosnia and Herzegovina. Acta entomologica serbica. Vol. 12, pp: 73-92.
16
Menetries, E., 1832. Catalogue raisonne desobjets de zoologie, recuilles dans un voyage au Caucase et jusqu’aux frontieres actuelles de la perse, entrepris par ordre de S.M.Empereur. St.petersburg. Impr. Acad. Imp. Sci., S. XXVIII, XXIX, XXXII. pp: 241-268.
17
Scoble, M.J., 1992. The lepidoptera : form, function, and diversity.Oxford; New York, Oxford University Press.
18
Smart, P., 1989. The illustrated encyclopedia of the butterfly world. New York, Crescent Books : Distributed by Crown Publishers.
19
Ten Hagen, W., 1998. Eineneue art des subgenus Agrodiaetus Hubner, 1822 ausdem Iran (Lepidoptera, Lycaenidae). Nachr ent ver Apollo, Frankfurt N.F. Vol. 18, No. 4, pp: 315-318.
20
Ten Hagen, W., 1999. Eineneue art der gattung Polyommatus Latreille, 1804 ausdem Iran (Lepidoptera, Lycaenidae). Nachr ent ver Apollo, Frankfurt N.F. Vol. 20, No. 1, pp: 19-24.
21
Triplehorn, C.A.; Johnson, N.F. and Borror, D.J., 2005. An introduction to the study of insects,Australia, Thomson, Brooks/Cole.
22
Tudor, O.; Dennis, R.; Greatorex-davies, J. and Sparks, T., 2004. Flower preferences of woodland butterflies in the UK: nectaring specialists are species of conservation concern. Biological Conservation. Vol. 119, pp: 397-403.
23
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی فونستیک شیرونومیده در رودخانه جاجرود
خانواده Diptera: Insecta) Chironomidae) با داشتن فراوان ترین و متنوع ترین حشرات گسترش جهانی دارد و در اغلب اکوسیستم های آب شیرین از جمله آب های داخلی ایران یافت می شود. با وجود این، پژوهش های معدودی برای شناسایی این گروه در ایران انجام شده و دانش موجود از گوناگونی فون و پراکندگی آن ها در کشور بسیار ناچیز است. برای شناخت لاروهای خانواده Chironomidae در رودخانه جاجرود، نمونه برداری های فصلی از چهار ایستگاه انتخابی (فشم، سعیدآباد، خجیر و پاکدشت) در گذر رودخانه با استفاده از توری نمونه برداری Dredge با سه تکرار در هر ایستگاه در سال 1394 انجام شد. نمونه ها پس از جمع آوری در محل نمونه برداری در الکل اتانول 70 درصد نگه داری شدند. در آزمایشگاه، ابتدا لاروهای Chironomidae از دیگر نمونه ها و اجزای بستر جداسازی و پس از تهیه لام دایمی با میکروسکوپ های نوری و فاز کنتراست و کلیدهای شناسایی موجود تا سطح جنس شناسایی شد. نتایج بررسی حاضر از خانواده شیرونومیده، وجود 4 جنس از سه زیرخانواده را در بخش های مختلف این رودخانه نشان داد. این زیرخانواده ها عبارتند از: Chironominae (شامل جنس Chironomus)، زیرخانواده Diamesinae (شامل 2 جنس Diamesa و Pseudodiamesa) و زیرخانواده Orthocladiinae مورد شناسایی قرار گرفتند.
http://www.aejournal.ir/article_60264_4630f8b46405750b8f1617406042a020.pdf
2017-12-22
315
322
فونستیک
شیرونومیده
رودخانه جاجرود
تهران
سحر
ارکیا
arkia066@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
AUTHOR
سیامک
یوسفی سیاه کلرودی
siamak_yousefi1@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
LEAD_AUTHOR
ندا
خرد پیر
n.kheradpir@gmail.com
3
گروه حشره شناسی، دانشکده کشاورزی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
AUTHOR
اعظم
کرمی
karami79@gmail.com
4
گروه زیست شناسی، دانشگاه پیام نور، تهران، صندوق پستی: 3697-19395
AUTHOR
ابراهیم نژاد، م. و نیکو، ح.، 1383. شناسائی تاکسونومیک و پراکنش بی مهرگان بزرگ رودخانه ماربر در استان اصفهان. مجله زیست شناسی ایران. جلد 17 ، شماره 3، صفحات 240 تا 260.
1
احمدی، م.؛ موسوی ننه کران، س.ک. و احمدی، م.ر.، 1381. شناسایی و معرفی شیرونومیده سواحل جنوبی دریای خزر (Chironomus albidus (Diptera: Chironomidae. مجله علوم و فنون دریایی. جلد 4، شماره 4، صفحات 55 تا 68.
2
افشین، ی.، 1373. رودخانه های ایران. وزارت نیرو. 345 صفحه.
3
حبیبی، ط.، 1380. جانورشناسی عمومی. انتشارات دانشگاه تهران. 475 صفحه.
4
خسروانی، ش.؛ محمدی زاده، ف. و یحیوی، م.، 1393. ارزیابی زیستی رودخانه حاجی آباد) استان هرمزگان( بااستفاده از ساختار جمعیت ماکروبنتوز. مجله بوم شناسی آبزیان. جلد 4، شماره 1، صفحات 33 تا 43.
5
سعیدی، ه.؛ فلاحی، ر. و ایزدیان، م.، 1389. مناسب ترین بستر برای نگه داری کرم خونی(Chironomus sp.) و گاماروس (Gammarus fasciatus) در شرایط آزمایشگاهی. فصلنامه محیط زیست جانوری. جلد 2، شماره2، صفحات 79 تا 84.
6
عباسپور، ر.؛ حسن زاده، ح.؛ علیزاده ثابت، ح. ر.؛ هدایتی فرد، م. و مسگران کریمی، ج.، 1392. ارزیابی کیفی آبرودخانه چشمه کیله با استفاده از جوامع درشت بی مهرگان کفزی و فاکتورهای فیزیکوشیمیایی آب. نشریه توسعه آبزی پروری. سال 7، شماره 4، صفحات 43 تا 56.
7
عمادی، ح.، 1386. زندگی ماهی ها. انتشارات آبزیان. تهران. 64 صفحه.
8
قریب خانی، م. و تاتینا، م.، 1387. توان تولید طبیعی رودخانه لوندویل آستارا بر اساس جوامع کفزیان. مجله شیلات. سال 2، شماره 4، صفحات 37 تا 55.
9
کرمی، ا؛ ابراهیم نژاد، م. و زمانپور، م.، 1993. چک لیست و کلید شناسایی برای لاروهای خانواده Chironomidae (Diptera: Insecta) در رودخانه ماربر (اصفهان، ایران). مجله تاکسونومی و بیوسیستماتیک. جلد ۶ ، شماره ۲۰ ، صفحات 49 تا 64.
10
نوانمقصودی، م.، 1391. بررسی کفزیان رودخانه قزل اوزن استان زنجان. مجله علمی شیلات ایران. سال21، شماره 4، صفحات 125 تا 138.
11
Allahbakhshi, E., 2005. Taxonomic identification of Chironomidae larvae (Diptera) in Golpayegan River and effects of some physical and chemical factors on their abundance and distribution. MSc thesis, University of Isfahan, Isfahan, Iran (in Persian). 75 p.
12
Ashe, P., 1983. A catalogue of chironomidae genera andsubgenera of the world including synonyms (Diptera: Chironomidae). Entomol. Scand Suppl. Vol. 17. pp: 1-68.
13
Bode, W., 1990. Chironomidae in Freshwater macroinverte brates of Northeastern NorthAmerica. Cornel Uni. Press. 442 p.
14
Bryce, D. and Hobart, A., 1972. The biology and identification of the larvae of Chironomidae (Diptera). Entomologist's Gazette. Vol. 23, pp: 175-217.
15
Callisto, M.; Goncalves, J.F.; Moreno, P.; Leal, J.J. and Steves, F.A., 2002. Diversity and biomass of Chironomidae larvae (Diptera) in an impacted coastal lagoon in Rio De Janeiro, Brazil. Brazilian Journal of Biology. Vol. 62, No. 1, pp: 77-84.
16
Chessman, B.C., 1995. Rapid assessment of rivers using macro invertebrates: A procedure based on habitat specific sampling, family level identification and biotic index. Australian Journal of Ecology. pp: 122-129.
17
Cranston, P.S. and Reiss, F., 1983. The larvae of Chironomidae (Diptera) of the Holoarctic region- Keys to subfamilies, Entomologica Scandinavica Supplement.
18
Vol. 19, pp: 11-15.
19
Cranston, P.S.; Oliver, D.R. and Saether, O.A., 1983. The larvae of Orthocladiinae (Diptera: Chironomidae) of the Holoarctic region Keys and diagnoses, Entomologica Scandinavica Supplement. Vol. 19, pp: 149-291.
20
Fakhri, F., 2001. Identification of Chironomidae larvae (Diptera) in Zayandehrood River and effects of some physical factors on their abundance and distribution. MSc thesis. University of Isfahan, Isfahan, Iran (in Persian). 96 p.
21
Fittkau, E.J. and Roback, S.S., 1983. The larvae of Tanypidinae (Diptera: Chironomidae) of the Holoarctic region Keys and diagnoses. Entomologica Scandinavica Supplement. Vol. 19, pp: 33-110.
22
Gaston, K. and Spicrer, J.I., 1998. Biogeography an Ecological and Evolutionary Approach. London, Blackwell Science. Sixth Edition. 563 p.
23
Hoffrichter, O., 2000. Late 20 century research on Chironomidae. The 13 International Symposium on Chironomidae, Shaker Verlag, Aachen. 213 p.
24
Hutchinson, J.W., 1993. A Phenomenological Theory for Strain Gradient Effects in Plasticity. J. Mech. Phys. Solids, Vol. 41, pp: 1825-1857.
25
Kellogg, L.L., 1994. Save our streams: Monitor's guide to aquatic macro invertebrates. Izaac Walton league,
26
America. 60 P.
27
Konstantinov, A.S., 1968.Chironomidae. In Atlas ofInvertebrates of Caspian Sea. Instritute of Vniro, Institute of Kaspernich, Mosqova. In Russian. 226 p.
28
Needham, J.G., 1962. A guide to the study of freshwater biology. Holden-day, San Francisco. 108 P.
29
Oliver, D.R., 1983. The larvae of Diamesinae (Diptera: Chironomidae) of the Holoarctic region, keys and diagnoses. Entomologica Scandinavica Supplement. Vol. 19,
30
pp: 115-147.
31
Palmer, M., 1985. Methods manual for bottom sediment sample collection. US Environmental Protection Agency, Chicago. 297 p.
32
Pennak, R.W., 1978. Freshwater invertebrates of United States. John Wiley and Sons, New York. 803 P.
33
Wetzel, R.G., 1993. Limnology. Saunders College Publishing, New York. 767 p.
34
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی خواص آنتی اکسیدانی کیتوزان استخراج شده از پوسته میگو رودخانه ای (Macrobrachium nipponenes)
کیتوزان یکی ازمهم ترین پلیمرهای زیست فعال است که مشتق استیل زدایی شده کیتین می باشد. در مطالعه حاضر، کیتوزان با استیل زدایی کیتین در طی زمان های مختلف از پوسته میگو رودخانه ای تهیه گردید. جهتمقایسهخواصآنتیاکسیدانی کیتوزان های به دست آمده (60C، C80 و 100 C ) در زمان های 60، 80 و 100 دقیقه، ازویژگی هایی شامل فعالیت آنتی اکسیدانی،قدرتمهاررادیکالآزاد 2و2دی فینیل،1-پیکریل –هیدرازیل ( DPPH) ، قدرت مهار رادیکال پراکسید هیدروژن، قدرت کاهندگی وکیلاته کنندگی کاتیونآهنسهظرفیتی استفادهگردید. توان کاهندگی کیتوزان (10 میلی گرم برمیلی لیتر) بین 0/42-0/72به دست آمد. توانایی مهار کیتوزان 60C نسبت به رادیکالDPPH، در غلظت 10 میلی گرم بر میلی لیتر 26/2درصد بود، در حالی که توانایی حذف این رادیکال توسط کیتوزان های 80C و 100 C به ترتیب برابر با 44/3 و 50/4 درصد ثبت گردید. قابلیت مهار رادیکال های پراکسید هیدروژن، دردامنه 58/4 تا 75/6 درصد برآوردگردید، درحالی که در1 میلی گرم بر میلی لیتر، قابلیت های کیلاته کنندگی یون های آهن، 64/3 تا 86/8 درصد مشاهده شد. مقادیر غلظت موثر برایفعالیت آنتی اکسیدانی درتمام کیتوزان ها کم تر از 1/4 میلی گرم بر میلی لیتر به دست آمد. فعالیت آنتی اکسیدانی کیتوزان های تهیه شده در زمان های مختلف، با مدت زمان استیل زدایی آن ها ارتباط داشت، به طوری که افزایش زمان داستیلاسیون منجر به افزایش معنی داری در فعالیت آنتی اکسیدانی کیتوزان شده است (0/05>p). کیتوزان های به دست آمده ازمیگو از فعالیت آنتی اکسیدانی قابل قبولی برخوردار بودند ومی توانند به عنوان منبع آنتی اکسیدانی در مکمل غذایی وصنایع دارویی به کار برده شوند.
http://www.aejournal.ir/article_63523_fa9d2d30060e88244292fdc6d64e437a.pdf
2017-12-22
323
332
کیتوزان
میگو رودخانه ای
فعالیت آنتی اکسیدانی
توان کاهنده گی
نفیسه
تنها
nafiseh.tanha1370@gmail.com
1
گروه بیولوژی دریا، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان،ایران، صندوق پستی: 1616
AUTHOR
کتایون
کریم زاده
karimzadehkathy@yahoo.co.uk
2
گروه بیولوژی دریا، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان،ایران، صندوق پستی: 1616
LEAD_AUTHOR
عسگر
زحمتکش کومله
aszahmat@yahoo.co.uk
3
گروه شیلات، مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان گیلان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
تحقیقی، م.؛ پاشایی راد، ش.؛ هزاوه، ن.؛ علاف نویریان، ح. و تحقیقی، ه.، 1392. مطالعه مورفولوژیکی و تاکسونومیکی میگوی رودخانه ای شرق (Macrobrachium nipponense) در رودخانه سیاه درویشان استان گیلان. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال5 ، شماره 3، صفحات 11تا19.
1
کریم زاده، ک.؛ زحمتکش، ع. و ولی پور، ع.، 1393. بررسی تغییرات ترکیب بدن شاه میگوی آب شیرین (Astacus leptodactylus) در سنین و وزن های مختلف. مجله پژوهش های جانوری. دوره 27، شماره 2، صفحات 270تا 281.
2
گرگین، س. و علی محمدی، ا.، 1383. نخستین گزارش از وجود میگویMacrobrachium nipponenseدر ایران و مقایسه مورفولوژیک آن با گونه Macrobrachium rosenbergii. مجله پژوهش و سازندگی. شماره 65، صفحات 57تا59.
3
Al-Sagheer, F.A.; Al-Sughayer, M.A.; Muslim, S. and Elsabee, M.Z., 2009.Extraction and characterization of chitin and chitosan from marine sources Gulf. Carbohydrate Polymers. Vol. 77, pp: 410-419.
4
Ambigaipalan, P. and Shahidi, F., 2017.Bioactive peptides from shrimp shell processing discards: antioxidant and biological activities, Journal of Functional Foods. Vol. 34, pp: 7-17.
5
Anraku, M.; Fujii, T.; Kondo Y.; Kojima, E.; Hata, T.; Tabuchi, N.; Tsuchiya, D.; Goromaru, T.; Tsutsumi, H. and Kadowaki, D., 2011. Antioxidant properties of high molecular weight dietary chitosan in vitro and in vivo. Carbohydrate Polymer. Vol. 83, pp: 501- 505.
6
Cabib, E.; Bowers, B.; Sburlati, A. and Silverman, S.J., 1988. Fungal cell wall synthesis: The construction of a biological structure. Microbiological Science. Vol. 5, pp: 370-375.
7
Dinis, T.C.P.; Madeira, V.M.C. and Almeida, L.M., 1994. Action of phenolic derivatives (acetaminophen, salicylate, and 5-amino salicylate) as inhibitors of membrane lipid peroxidation and as peroxyl radical scavengers.archives of Biochemistry and Biophysics. Vol. 315, pp: 161-169.
8
De Grave, S. and Grane, A., 2006. The establishment of the oriental river prawn, Macrobrachium nipponense (De Haan, 1849) in Anzali lagoon, IRAN. Aquatic Invasions. Vol. 1, No. 4, pp: 204-208.
9
Esumi, K.; Takei, N. and Yoshimura, T., 2003. Antioxidant-potentiality of gold chitosan nanocomposites. Colloids and Surfaces B: Biointerfaces. Vol. 32, pp: 117-123.
10
Guo, Z.; Xing, R.; Liu, S.; Yu, H.; Wang, P.; Li, C. and Li, P., 2005.The synthesis and antioxidant activity of the Schiff bases of chitosan and carboxymethyl chitosan. Bioorganic and Medicinal Chemistry Letters. Vol. 15, pp: 4600-4603.
11
Govindarajan, R.; Rastogi, S.; Vijayakumar, M.; Shirwaikar, A. and Rawat, A.K.S., 2003. Studies on the Antioxidant Activities of Desmodium gangeticum. Biological and Pharmaceutical Bulletin. Vol. 26, pp: 1424-1427.
12
Hafsa, J.; Smach, M.A.; Charfeddine, B.; Limem, K.; Majdoub, H. and Rouatbi, S., 2016.Antioxidant and antimicrobial proprieties of chitin and chitosan extracted from Parapenaeus Longirostris shrimp shell waste. Annales Pharmaceutiques Françaises. Vol. 74, pp: 27-33.
13
Hajji, S.; Younes, I.; Ghorbel-Bellaaja, O.; Hajji, R.; Rinaudo, M.; Nasria, M. and Jelloulia, K., 2014. Structural differences between chitin and chitosan extracted from three different marine sources. International Journal of Biological Macromolecules. Vol. 65, pp: 298-306.
14
Inoue, K.; Baba, Y.; Yoshizuka, K.; Noguchi, H. and Yoshizaki, M., 1988. Selectivity series in the adsorption of metal ions on a resin prepared by crosslinking copper (II) complexed chitosan. Chemistry Letters. Vol. 8, pp: 1281-1284.
15
Jeon, Y.J. and Kim, S.K., 2001. Potential immune stimulating effect of anti tumoral fraction of chitosan oligosaccharides. Journal of Chitin and Chitosan. Vol. 6, pp: 163-167.
16
Kim, S.K.; Rajapakse, N. and Shahidi, F., 2007. Production of bioactive chitosan oligosaccharides and their potential use as nutraceuticals. In: Marine Nutraceuticals and Functional Foods. Barrow C and Shahidi F, eds. CRC Press, London and New York, GB and US. pp: 183-196.
17
Kumar, M.N.V.R., 2000. A review of chitin and chitosan applications. Reactive and Functional Polymers. Vol. 46, pp: 1-27.
18
Lee, D.S.; Jeong, S.Y.; Kim, Y.M.; Lee, M.S.; Ahn, C.B. and Je, J.Y., 2009. Antibacterial activity of aminoderivatized chitosans against methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA). Bioorginc Medicinal Chemistry. Vol. 17, pp: 7108-7112.
19
Lin, H.Y. and Chou, C.C., 2004. Antioxidant activities of water-soluble disaccharide chitosan derivatives. Food Research International. Vol. 37, pp: 883-889.
20
Lin, S.B.; Lin, Y.C. and Chen, H.H., 2009. Low molecular weight chitosan prepared with the aid of cellulose, lysozyme and chitinase: characterisation and antibacterial activity. Food Chemistry. Vol. 116, pp: 47-53.
21
Lingnert, H.; Vallentin, K. and Eriksson, C.E., 1979. Measurement of antioxidative effect in model system. Journal of Food Processing and Preservation. Vol. 3, pp: 87–104.
22
Ma, G.; Yang, D.; Zhou, Y.; Xiao, M.; Kennedy, J.F. and Nie, J., 2008. Preparation and characterization of water soluble N-alkylated chitosan. Carbohydrate Polymer. Vol. 74, pp: 121-126.
23
Oyaizu, M., 1986. Studies on products of browning reactions: Antioxidative activities of products of browning reaction prepared from glucosamine. Japanese Journal of Nutrition. Vol. 44, pp: 307-315.
24
Park, P.J.; Je, J.Y. and Kim, S.K., 2004b. Free radical scavenging activities of differently deacetylated chitosans using an ESR spectrometer. Carbohydrate Polymer. Vol. 55, pp: 17-22.
25
Qin, Y., 1993. The chelating properties of chitosan fibres. Journal of Applied Polymer Science. Vol. 49, pp: 727-731.
26
Rinaudo, M., 2006. Chitin and chitosan: properties and applications, Progress in Polymer Science. Vol. 31, pp: 603-632.
27
Samar, M.M.; El-Kalyoubi, M.H.; Khalaf, M.M. and Abd El-Razik, M.M., 2013. Physicochemical, functional, antioxidant and antibacterial properties of chitosan extracted from shrimp wastes by microwave techniqueAnnals of Agricultural Science. Vol. 58, No.1, pp: 33-41.
28
Seedevi, P.; Moovendhan, M.; Vairamani, S. and Shanmugam, A., 2017. Evaluation of antioxidant activities and chemical analysis of sulfated chitosan from Sepia prashadi. International Journal of Biological Macromolecules .Vol. 3, pp: 12-22.
29
Shimada, K.; Fujikawa, K.; Yahara, K. and Nakamura, T., 1992. Antioxidative properties of xanthan on the autoxidation of soybean oil in cyclodextrin emulsion. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 40, pp: 945-948.
30
Tanha,N.; Karimzadeh,K. and Zahmatkesh, A., 2017. A Study on the Antimicrobial Activities of Chitin and Chitosan Extracted from Freshwater Prawn Shells (Macrobrachium nipponense). International Journal of Health Studies. Vol. 3, No. 3, pp: 16-19.
31
Xie, W.; Xu, P. and Liu, Q., 2001. Antioxidant activity of water-soluble chitosan derivatives. chelating ability. Bioorganic and Medicinal Chemistry Letters. Vol. 11, No. 13, pp: 1699-1701.
32
Xing, R.; Liu, S.; Yu, H.; Guo, Z.; Li, Z. and Li, P., 2005. Preparation of high-molecular weight and high-sulfate content chitosans and their potential antioxidant activity in vitro. Carbohydrate Polymer. Vol. 61, pp: 148-154.
33
Yen, M.T.; Tseng, Y.H.; Li, R.C. and Mau, J.L., 2007. Antioxidant properties of fungal chitosan from shiitake stapes. LWT- Food Science and Technology. Vol. 40, pp: 255-261.
34
Yen, M.T.; Yang, J.H. and Mau, J.L., 2008. Antioxidant properties of chitosan from crab shells. Carbohydrate Polymer. Vol. 74, pp: 840-844.
35
Younes, I.; Hajji, S.; Frachet, V.; Rinaudo, M.; Jellouli, K. and Nasri, M., 2014. Chitin extraction from shrimp shell using enzymatic treatment. Antitumor, antioxidant and antimicrobial activities of chitosan, International Journal of Biology of Macromolecule. Vol. 69, pp: 489-498.
36
Younes,I.; Frachetb, V.; Rinaudo,M.; Jelloulia, K. and Nasri, M., 2016. Cytotoxicity of chitosans with different acetylation degrees and molecular weights on bladder carcinoma cells. International Journal of Biological Macromolecules. Vol. 84, pp: 200-207.
37
Zhong, Z.; Ji, X.; Xing, R.; Liu, S.; Guo, Z.; Chen, X. and Li, P., 2007. The preparation and antioxidant activity of the sulfanilamide derivatives of chitosan and chitosan sulfates. Bioorganic Medicinal Chemistry Letters. Vol. 15, pp: 3775-3782.
38
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی جنس (Lydia (Brachyuran: Oziidae براساس مطالعات مولکولی و فراساختاری اولین گونوپود جنس نر
جنس Lydia متعلق به زیرشاخه سختپوستان و رده خرچنگهای حقیقی می باشد. تنها گونهای از آن که در خلیج فارس یافت شده است Lydia tenax نام دارد. از آن جایی که در قلمرو دریایی گونه های شناسایی نشده به وفور وجود دارند روش شناسایی سنتی مبتنی بر ویژگی های مورفولوژیک شناسایی آن ها را با مشکل مواجه میکند. اخیرا ژن COI برای شناسایی و تعیین حد و مرز گونهای کاربرد فراوانی دارد به همین منظور از نشانگر مولکولی ژن COI و هم چنین فراساختار اولین گونوپود جنس نر استفاده شد برای این که احتمال وجود گونههای مخفی در میان 3 مورفوتایپ این گونه نشان داده شود. بنابراین از گونه منسوب به Lydia tenax از سواحل صخرهای استان بوشهر نمونه برداری انجام شد. سپس اولین گونوپودهای جنس نر، جداسازی شده و با میکروسکوپ الکترونی اسکنینگ (SEM) مورد عکس برداری قرار گرفتند. جهت مطالعات مولکولی DNA نمونه ها با استفاده از روش فنل-کلروفروم استخراج و قطعه ژنی زیر واحد یک سیتوکروم اکسیداز میتوکندری (COI) تکثیر و توالی یابی شد. نتایج مطالعه حاضر نشان داد توالی نوکلئوتیدی این قطعه ژنی میتوکندریایی (COI) در نمونه های مورد بررسی یکسان نیست و از این 3 مورفوتایپ نمونه Lydia sp.FCH با بقیه مورفوتایپ ها تفاوت بیش تری را نشان داد و در کلادی جداگانه قرار گرفت. مطالعه دقیق فراساختار اولین گونوپود جنس نر در 3 مورفوتایپ، نیز تفاوت هایی را در قسمت راسی نشان داد. بررسی حاصل نشان داد، زمانی که تشخیص گونه ها به دلیل شباهت های زیاد مورفولوژی مشکل است، بررسی های فراساختار اولین گونوپود جنس نر و شناسایی براساس ژن COI در تفکیک گونه ها سودمند خواهد بود.
http://www.aejournal.ir/article_63561_a084a16c97d24246afbb94152dff0950.pdf
2017-12-22
333
338
Lydia tenax
مولکولی
COI
فراساختاری
گونوپود
خلیج فارس
فریده
چناری
chenari_bio@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر
LEAD_AUTHOR
محمدباقر
نبوی
nabavishiba@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر
AUTHOR
محمدعلی
سالاری
salari@kmsu.ac.ir
3
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر
AUTHOR
احمد
سواری
savari53@yahoo.com
4
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر
AUTHOR
حسین
ذوالقرنین
zolgharnein@kmsu.ac.ir
5
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر
AUTHOR
سعیدپور، ب.، 1373. شناسایی خرچنگ های منطقه جزر و مدی خلیج چابهار و سواحل اطراف آن. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال. 121 صفحه.
1
Abele, L.G., 1971. Scanning electron photomicro-graphs of brachyuran gonopods. Crustaceana. Vol. 21, pp: 217-219.
2
Chambers, C.L.; Payne, J.F. and Kennedy, M.L., 1980. Geographic variation in the first pleopod of the form I male dwarf crayfish, Cambarellus puer Hobbs (Decapoda: Cambaridae). Crustaceana. Vol. 38, pp: 169-177.
3
Chen, W.; Cheng, J.; Chen, T. and Hsu, M.J., 2007. A comparison of the micromorphology of the G1 of freshwater crabs of the genus Geothelphusa (Brachyura, Potamidae) from Taiwan. Crustaceana. Vol. 80, pp: 861-889.
4
Claridge, M.F.; Dawah, H.A.; and Wilson, M.R., (Eds.) 1997. Species: The Units of Biodiversity. Chapman & Hall, London.
5
Dayrat, B., 2005. Towards integrative taxonomy. Biol J Linnean Soc. Vol. 85, pp: 407-415.
6
Folmer, O.; Black, M.; Hoeh, W.; Lutz, R.; and Vrijenhoek, R., 1994. DNA primers for amplification of mitochondrial cytochrome c oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates. Mol Mar Biol Biotechnol. Vol. 3, pp: 294-299.
7
Gaston, K.J. and O’Neill, M.A., 2004. Automated species identification: Why not? "Philos Trans R Soc Lond B Biol Sci. Vol. 359, pp: 655-667.
8
Gibbs, J., 2009. Integrative taxonomy identifies new (and old) species in the Lasioglossum (Dialictus) tegulare (Robertson) species group (Hymenoptera, Halictidae). Zootaxa.Vol. 2032, pp: 1-38.
9
Harrison, J.S. and Hanley, P.W., 2005. Austinixa aidae Righi, 1967 and A. hardyi Heard and Manning, 1997 (Decapoda: Brachyura: Pinnotheridae) synonymized, with comments on molecular and morphometric methods in crustacean taxonomy. J Nat His. Vol. 39, pp: 3649-3662.
10
Hebert, P.D.N.; Cywinska, A.; Ball, S.L. and deWaard, J.R., 2003. Biological identifications throught DNA barcodes. Proc R Soc Lond [Biol]. Vol. 270, pp: 313-321.
11
Hennig, W., 1966. Phylogenetic Systematics, University of Illinois Press, Urbana. 280 p.
12
Gillikin, A.P. and Schubart, C.D., 2004. Ecology and systematics of mangrove crabs of the genus Perisesarma (Crustacea: Brachyura: Sesarmidae) from East Africa. Zool J Linnean Soc. Vol. 141, pp: 435-445.
13
Knowlton, N., 1993. Sibling species in the sea. Annu Rev Ecol Evol Syst. Vol. 24, pp: 189-216.
14
Lai, J.L.; Thoma, B.P.; Clark, P.F.; Felder, D.L. and Ng, P.K., 2014. Phylogeny of eriphioid crabs (Brachyura, Eriphioidea) inferred from molecular and morphological studies. Zool Scripta. Vol. 43, pp: 52-64.
15
Lee, M.S.Y., 2004. The molecularisation of taxonomy. Inverse system. Vol. 18, pp:1-6.
16
Moritz, C. and Cicero, C., 2004. DNA barcoding: promise and pitfalls. PLoS Biology. Vol. 2, pp: 1529-1531.
17
Moyano, M.P.; Gavio, M.A. and Cuartas, E.I., 2011. Copulatory system of the spider crab Libinia spinosa (Crustacea: Brachyura: Majoidea). J. Mar. Biol. Assoc. U. K. Vol. 91, pp: 1617-1625.
18
Naderloo, R., 2011. Grapsoid crabs (Decapoda: Brachyura: Thoracotremata) of the Persian Gulf and the Gulf of Oman. Zootaxa.Vol. 3048, pp:1-43.
19
Rorandelli, R.; Paoli, F.; Cannicci, S.; Mercati, D. and Giusti, F., 2008. Characteristics and fate of the spermatozoa of Inachus phalangium (Decapoda, Majidae): description of novel sperm structures and evidence for an additional mechanism of sperm competition in Brachyura. J. Morphol. Vol. 269, pp: 259-271.
20
Radulovici, A.; Archambault, P. and Dufresne, F., 2010. DNA Barcodes for marine Biodiversity: Moving Fast Forward. Journal Diversity. Vol. 2, pp: 450-472.
21
Stephensen, K., 1946. The Brachyura of the Iranian Gulf. Danish Scientific Investigations in Iran, Part IV. E. Munksgaard, Copenhagen. Vol. 2, pp: 57-237.
22
Swofford, D., 2002. PAUP: phylogenetic analysis using parsimony, version 4.0 b10. Sunderland, MA: Sinauer Associates.
23
Tamura, K.; Stecher, G.; Peterson, D.; Filipski, A. and Kumar, S., 2013. MEGA6: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 6.0.
24
Will, K.W.; Mishler. B.D. and Wheeler, Q.D., 2005. The perils of DNA barcoding and the need for integrative taxonomy. Syst Biol. Vol. 54, pp: 844-851.
25
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه توانایی دو گونه کرم خاکی Eisenia fetida و Dendrobaena veneta در تولید ورمی کمپوست
مقایسه دو گونه کرم خاکی Eisenia fetida و venetaDendrobaena در تولید ورمی کمپوست از دو ماده آلی کمپوست زباله شهری و کود گاو مورد بررسی قرار گرفت. نتایج آزمون T نشان داد اختلاف در افزایش نیتروژن در هر دو بستر توسط دو گونه کرم معنیدار نبوده است. فسفر کل در محصول نهایی ورمی کمپوست در هر دو بستر افزایش داشته است (0/05˂p)، اما اختلاف فعالیت دو گونه کرم خاکی در افزایش فسفر در ورمی کمپوست کود گاو از نظر آماری معنیدار نبوده و در ورمی کمپوست زباله شهری معنیدار بوده (0/05˂p) و از اینرو، گونه آیزنیا فتیدا عملکرد بهتری از خود نشان داده است. در بستر کود گاو اختلاف آماری معنیداری در میانگین بیش ترین تعداد کرم در دو گونه، وجود ندارد هم چنین اختلاف دو گونه کرم خاکی از نظر میانگین تعداد کوکون برای هر کرم در روز نیز معنیدار است (0/05˂p). مقایسه صفات زیستی دو گونه کرم خاکی در بستر کمپوست زباله نشان میدهد با وجودی که اختلاف دو گونه از نظر میانگین کلی تعداد کوکون، میانگین تعداد کوکون برای هر کرم و میانگین تعداد کوکون برای هر کرم در روز، معنیدار است (0/05˂p) و E. fetida عملکرد بهتری از خود نشان داده است، با این حال دو گونه از نظر میانگین بیش ترین تعداد کرم، اختلاف معنیداری ندارند. در مجموع کرمهای E. fetidaسرعت رشد بیش تری دارند و چرخه تکثیر آن ها کوتاهتر است. نتایج نشان داد کرمهای خاکی D. venetaشباهت زیستی زیادی با E. fetida دارد و قابلیت مناسب این گونه باعث میشود تا بتوان از این کرم خاکی نیز در فرآیند تولید ورمی کمپوست استفاده نمود.
http://www.aejournal.ir/article_63666_96a267312fcb4f33468313710d66ee86.pdf
2017-12-22
339
346
کرمهای خاکی
اپیجییک
کود گاو
کمپوست زباله
مجتبی
یحیی آبادی
yahyabadi@gmail.com
1
بخش تحقیقات خاک و آب، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان اصفهان، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اصفهان، ایران، صندوق پستی: 199-81785
LEAD_AUTHOR
هاشمی مجد، ک.، 1382. شناسایی گونة Eisenia fetida برخی از مناطق شمالی ایران. مجله علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی. سال 7، شماره 4، صفحات 61 تا 70.
1
یحیی آبادی، م.، 1391. کرمها زباله هایم را میخورند. نشر نصوح. 175 صفحه.
2
یحیی آبادی، م.، 1394. بررسی تنوع کرمهای خاکی اپیجئیک در استان اصفهان. فصلنامه محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 1، صفحات 133 تا 142.
3
Aira, M.; Monroy, F.; Dominguez, J. and Mato, S., 2002. How earthworm density affects microbial biomass and activity in pig manure. Eur. J. Soil Boi. Vol.38, pp: 7-10.
4
Baker, G. and Kilpin, G., 1992. CSIRO Double Helix Science club, Earthworm Identifier. CSIRO Publication, East Melbourne, 210 p.
5
Benitez, E.; Nogales, R.; Masciandro, G. and Ceccanti, B., 2000. Isolation by isoelectric focusing of humic–urease complexes from earthworm (Eisenia fetida) processed sewage sludges. Biol. Fert. Soils. Vol. 31, pp: 489-493.
6
Birundha, M.; John, J.; Paul, A. and Mariappan, P., 2013. Growth and reproduction of Perionyx excavatus in different organic wastes. Int.J.Cur.Microbio.Ap.Sci. Vol. 2, pp: 28-35.
7
Bowman, H., 1992. A defined medium for the study of growth and reproduction of earthworm Eisenia fetida. J. Biol. Fertil Soils. Vol. 10, No. 4, pp: 285-289.
8
Carica, C.; Ceccanti, B. and Masciandro, G., 1995. Phosphatase and beta glucosidase in humic substances from animal waste. Bio. Technology, Vol. 53, No. 1, pp: 79-87.
9
Edwards, C.A.; Dominguez, J. and Neuhauser, E.F., 1998. Growth and reproduction of Perionyx excavatus (Perr.) (Megascolecidae) as factors in organic waste management. Biol. Fert. Soils. Vol. 27, pp: 155-161.
10
Edwards, C.A. and Bohlen, J.P., 1996. Biology and Ecology of earthworms. Chapman & Hall, London. 436 p.
11
Edwards, C.A. and Neuhauser, E.F., 1988. Earthworms in waste and environmental management. Academic publishing, Nether Lands. 391 P.
12
Garg, V.K. and Kaushik, P., 2005. Vermistabilization of textile mill sludge spiked with poultry droppings by epigeic earthworm Eisenia fetida. Bioresource Tech. Vol. 96,pp: 1063-1071.
13
Hale, C.M.; Frelich, L.E. and Reich, P.B., 2000. Impact of invading European earthworms on understory plant communities in previously worm-free hard wood forest of Minnesota. Abstract of the Ecological Society of America. Vol. 85, pp: 112.
14
Haimi, J. and Huhta, V., 1986. Capacity of various organic residues to support adequate earthworm biomass for vermicomposting. Biol. Fert. Soils. Vol. 2, pp: 23-27.
15
Lee, K.E., 1992. Some trends opportunities in earthworm research or: Darwin’s children. The future of our discipline. Soil Biol. Biochem. Vol. 24, pp: 1765-1771.
16
Lee, K.E.; 1985. Earthworms. Their Ecology and relationships with soils and Land use. Academic press, Sydney. 411 P.
17
Le Bayon, R.C. and Binet, F., 2006. Earthworm changes the distribution and availability of phosphorous in organic substrates. Soil Biol. Biochem. Vol. 38, pp: 235-246.
18
Loh, T.C.; Lee, Y.C.; Liang, J.B. and Tan, D., 2005. Vermicomposting of cattle and goat manures by Eisenia foetida and their growth and reproduction preference. Biores. Tech. Vol. 96, No. 1, pp: 111-114.
19
Mackey, D. and Kladivko, E.J., 1985. Earthworms and rate of breakdown of soybean and maize residues in soil. Soil Biology and Biochemistry. Vol. 17, No. 6, pp: 851-857.
20
Manna, M.C.; Jha, S.; Ghosh, P.K. and Acharya, C.L., 2003. Comparative efficiency of three epigeic earthworms under different deciduous forest litters decomposition. Bioresource Tech. Vol. 88, pp: 197-206.
21
Ndegwa, P.M.; Thompson, S.A. and Das, K.C., 2000. Effects of stocking density and feeding rate on vermicomposting of biosolids. Bioresource Tech. Vol. 71, No. 1, pp: 5-12.
22
Neuhauser, E.F.; Loehr, R.C. and Makecki, M.R., 1988. The potential of earthworms for managing sewage sludge. In: Edwards, C.A., Neuhauser, E.F., Earthworm in waste and environmental management. SPB Academic Publishing. pp: 9-20.
23
Suthar, S., 2007. Vermicomposting potential of Perionyx sansibaricus (Perrier) in different waste materials. Bioresource Tech. Vol. 98, No. 6, pp: 1231-1237.
24
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه اثرات پرورش ماهیان خاویاری بر پراکنش، تراکم و ﺗﻮده زﻧﺪه بزرگ بی مهره گان در ﺧﻠﻴﺞ ﮔﺮﮔﺎن
امروزه اثرات زیست محیطی ناشی از پرورش ماهی بر کیفت آب و جوامع کفزی امری بدیهی بر آلودگی آب است. به همین منظور، مطالعه ای جهت بررسی پراکنش، فراوانی و توده زنده بزرگ بی مهره گان خلیج گرگان در محدوده حصارهای پرورشی ماهیان خاویاری صورت گرفت. تحقیق به صورت فصلی از مرداد 1394 الی تیرماه 1395 انجام شد. 5 ایستگاه با 3 تکرار به ترتیب شامل مرکز حصار، 5، 25، 50 و 100 متری از حصار درنظر گرفته شد. نمونه برداری از بستر توسط نمونه بردار ون وین گرب با سطح 0/05 مترمربع (25×20 سانتی متر) صورت گرفت. تراکم، درصد فراوانی و میزان زی توده هر گروه تعیین گردید. در مجموع 11 جنس و 10 خانواده از 3 شاخه بزرگ جانوری شامل نرم تنان (Mollusks)، بندپایان (Arthropods)، کرم ها (Annelids) مشاهده شد. براساس نتایج به دست آمده بیش ترین درصد فراوانی نمونه ها در طول سال متعلق به خانواده پیرگولیده (Pyrgulidae (Hydrobiidae و کوکلیپویده (Cochliopidae) از شکم پایان (Gastroppda) به ترتیب 33/83 % و 26/05%، کم ترین آن متعلق به خانواده گاماریده (Gammaridae) از سخت پوستان (Crustacean) با 0/05 % بودند. نتایج نشان داد، بیش ترین پراکنش و فراوانی متعلق به جنس Pyrgohydrobia sp. از خانواده پیرگولیده (3410 عدد) بود. بیش ترین و کم ترین فراوانی گونه های مشاهدهشده به ترتیب مربوط به فصل پاییز (3263 عدد) و بهار (2044 عدد) بود. بیش ترین و کم ترین فراوانی مربوط به ایستگاه های 3 و 1 به ترتیب با 2469و 1821 عدد بود. با این حال، مطالعات نشان داد که تفاوت معنی داری در پراکنش فراوانی جوامع کف زی در اطراف حصارهای پرورشی دیده نشد (0/05<p).
http://www.aejournal.ir/article_63689_cfdbffaf7b765f66ef059d09d6594045.pdf
2017-12-22
347
354
کیفیت آب
آلودگی آب
زی توده
ماهیان خاویاری
خلیج گرگان
دریای خزر
محمد
فرهنگی
s.farhangi@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
سید عباس
حسینی
abbas_hoseini@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
حجت الله
جعفریان
hojat.jafaryan@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، صندوق پستی: 4971799151
AUTHOR
رسول
قربانی
rasulghorbani@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
محمد
هرسیج
m_harsij80@yahoo.com
5
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، صندوق پستی: 4971799151
AUTHOR
محمد
سوداگر
sudagar_m@yahoo.com
6
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گرگان، ایران
AUTHOR
احمدی، م. ر. و نفیسی، م.، 1380. شناسایی موجودات شاخص بی مهره آب های جاری. انتشارات خبیر، 234 صفحه.
1
اﺟﻼﻟﻲ ﺧﺎﻧﻘﺎه، ک.؛ اﻛﺒﺮزاده، غ.؛ آﻗﺎﺟﺮی، ش.؛ ﻧﮕﺎرﺳﺘﺎن، ح.؛ ﺗﻤﺪﻧﻲ، س. و اﻛﺒﺮی، ح.، 1389. ﺑﺮرﺳﻲ اﺛﺮات ﭘﺴﺎب ﻣﺰارع ﭘﺮورش ﻣﻴﮕﻮ ﺑﺮ توزیع و ﺗﺮاﻛﻢ ﻣﺎﻛﺮوﺑﻨﺘﻮزﻫﺎ در ﺧﻮر ﻣﺎزغ ﻫﺮﻣﺰﮔﺎن. مجله اقیانوس شناسی. سال 1، شماره 3، صفحات 1 تا 5.
2
باقری، ح.؛ درویشی بسطامی، ک.؛ حمزه پور، ع.؛ سلطانی، ف. و اکبریان، ا.، 1392. تدوین دستورالعمل بررسی و پایش اکولوژِیک آب های ساحلی با استفاده از شاخص کف زیان (مطالعه موردی سواحل جنوب شرقی خزر). اداره کل حفاظت محیط زیست استان گلستان. طرح پژوهشی. 138 صفحه.
3
تجری، م.؛ رضیعی، م.؛ افسا، س.؛ عظیمی، ع.؛ شامخی رنجبر، ا. و حامی طبری، ا.، 1392. ﺑﺮرﺳﯽﺗﻨﻮع، ﻓﺮاواﻧﯽ و ﺑﯿﻮﻣﺎس کف زیان ﮔﻤﯿﺸﺎن ﺗﺎﻻب در ﮔﻠﺴﺘﺎن اﺳﺘﺎن. مجله زیست شناسی جانوری. سال 6، شماره 2، صفحات 11 تا 19.
4
سقلی، م.؛ باقراف، ر.؛ پاتیمار، ر.؛ حسینی، س.ع. و مختومی، ن.م.، 1391. ﭘﺮاﻛﻨﺶ، ﻓﺮاواﻧﻲ و ﺗﻮده زﻧﺪه ﻣﺎﻛﺮوﺑﻨﺘﻮزﻫﺎی ﺧﻠﻴﺞ ﮔﺮﮔﺎن و ﺟﻨﻮب ﺷﺮﻗﻲ درﻳﺎی ﻣﺎزﻧﺪران، ﮔﻠﺴﺘﺎن اﺳﺘﺎن. مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. شماره 4، صفحات 45 تا 58.
5
سلیمانی راد، آ.؛ کامرانی، ا.؛ کشاورز، م.؛ وزیری زاده، ا.؛ بهره مند، م.، 1390. ﺑﺮرﺳﻲ ﺑﻮمﺷﻨﺎﺧﺘﻲ ﺟﻤﻌﻴﺖ ﻣﺎﻛﺮوﺑﻨﺘﻮزﻫﺎی منطقه ﺣﻔﺎﻇﺖ ﺷﺪه ﺧﻮرﮔﺎﺑﺮﻳﻚ در ﺷﻬﺮﺳﺘﺎن ﺟﺎﺳﻚ (دریای عمان). مجله اقیانوس شناسی. شماره 2، شماره 7، صفحات31 تا 37.
6
ﺳﻠﻴﻤﺎﻧﻲ رودی، ع. 1373. ﻓﻮن ﺑﻨﺘﻴﻚ ﺣﻮﺿﻪ ﺟﻨﻮﺑﻲ درﻳﺎی ﺧﺰر اﻋﻤﺎق 40 تا 80 متر. ﻣﺠﻠﻪ ﻋﻠﻤﻲ ﺷﻴﻼت اﻳﺮان. سال 3، شماره 2، صفحات 46 تا 51.
7
ﺣﺎﺟﯽﻣﺮادﻟﻮ، ع.م.؛ ﻗﺮﺑﺎﻧﯽ، ر،؛ رﺣﻤﺎﻧﯽ. ح؛ اﯾﺮاﻧﯽ، ع.؛ ﻧﻌﯿﻤﯽ، ا. و ملایی، م .، 1386. ﻣﻄﺎﻟﻌﻪ ﺗﺮﮐﯿﺐ و ﻓﺮاواﻧﯽ کف زیان و ﻣﺎﻫﯿﺎن آﺑﺮاﻫﻪ ﻣﻨﺘﻬﯽ ﺑﻪ ﺗﺎﻻب ﮔﻤﯿﺸﺎن. ﻣﺠﻠﻪ شیلات، داﻧﺸﮕﺎه آزاد اسلامی واحد آزادﺷﻬﺮ. سال 1، شماره 1، صفحات 27 تا 38.
8
دلیناد، ل. و نظری، ف.، 1380. اطلس بی مهرگان دریای خزر. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 610 صفحه.
9
طاهری،م.؛سیف آبادی،ج.ویزدانی،م.، 1386. ﺑﺮرﺳﻲ اﻛﻮﻟﻮژﻳﻜﻲ و تغییرات سالانه جمعیت پرتاران ﺧﻠﻴﺞ ﮔﺮﮔﺎن-ساحل ﺑﻨﺪرﮔﺰ. مجله زیست شناسی. سال 2، شماره 20، صفحات 286 تا 294.
10
عقیلی، ک.؛ آقایی مقدم، ع.؛ حامی طبری، ا. و میرهاشمی رستمی، س.ا.، 1393. بررسی جوامع بنتیکی خلیج گرگان در حصار توری جهت پرورش و مولدسازی ماهی کپوردریایی. اولین همایش آبزی پروری نوین، فرصت ها، چالش ها. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران، گرگان، 8 صفحه.
11
قانع، ه.، 1383. ارزیابی زیستی و فون کف زیان آب های جاری. مجموعه مقالات اولین کنگره علومدامی و آبزیان کشور، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تهران. صفحات 1070 تا 1074.
12
قرایی، ا.؛ میردار، ج.؛ راهداری، ع.؛ کیخا، م.؛ خندان بارانی، ه. و کرمی،ر.،1395. تغییرات زمانی و مکانی ساختارجامعه فیتوپلانکتونی در آب های مخازن چاه نیمههای سیستان. مجله بوم شناسی آبزیان. جلد 5، شماره 4، صفحات 40 تا 50.
13
ﻛﻮﺛﺮی. س.، وﺛﻮﻗﻲ، غ.؛ ﻓﺎراﺑﻲ، س.م. و سلیمانی رودی، ع.، 1388. ﻣﻘﺎﻳﺴﻪ ﻓﺮاواﻧﻲ و زی توده ﻣﺎﻛﺮوﺑﻨﺘﻮزﻫﺎی درﻳﺎی ﺧﺰر در ﺣﻮﺿﻪ اﺳﺘﺎن ﻣﺎزﻧﺪران. ﻣﺠﻠﻪ ﻋﻠﻤﻲ شیلات ایران. سال 2، صفحات 14 تا 21.
14
ﻣﻮﺳﻮیﻛﺸﻜﺎ، م.؛ ﺳﻴﻒآﺑﺎدی،ج.؛ ﻋﻮﻓﻲ، ف.؛ دﻟﻴﺮﺧﻮاه آزاده، ح. و طاولی، م.، 1389. ﭘﺮاﻛﻨﺶ و ﻧﻮﺳﺎﻧﺎت ﻓﺼﻠﻲ کف زیان ﺑﺰرگ ﺧﻠﻴﺞ ﮔﺮﮔﺎن (ﺧﺰر ﺟﻨﻮب ﺷﺮﻗﻲ درﻳﺎی). مجله زیست شناسی. سال 4، شماره 23، صفحات 605 تا 612..
15
نیکویان، ع.، 1376. ﺑﺮرﺳﯽ ﺗﺮاﮐﻢ، ﭘﺮاﮐﻨﺶ، ﺗﻨﻮع و ﺗﻮﻟﯿﺪ ﺛﺎﻧﻮﯾﻪ ﺑﯽﻣﻬﺮﮔﺎن کفزی در ﺧﻠﯿﺞ ﭼﺎﺑﻬﺎر. رﺳﺎﻟﻪ دﮐﺘﺮی ﺑﯿﻮﻟﻮژی درﯾﺎ، داﻧﺸﮕﺎه آزاد اسلامی واﺣﺪ ﻋﻠﻮم و ﺗﺤﻘﯿﻘﺎت. 217 صفحه.
16
نبوی، س. م.؛ یاوری، و.؛ سیدمرتضایی، س.ر.؛ دهقان مدیسه، س. و جهانی، ن.، 1389. بررسی تغییرات فراوانی و تنوع پرتاران در زیر قفس های پرورش ماهی خورغزاله (خورموسی). مجله اقیانوس شناسی. سال 1، شماره 1، صفحات 1 تا 9.
17
ﻫﺎﺷﻤﻴﺎن، ع.، 1377. ﭘﺮاﻛﻨﺶ و ﺗﻐﻴﻴﺮات ﻓﺼﻠﻲ زیﺗﻮده و ﺗﻨﻮع ﻣﺎﻛﺮوﺑﻨﺘﻮزﻫﺎی ﻏﺎﻟﺐ ﺳﻮاﺣﻞﺟﻨﻮﺑﻲ درﻳﺎی خزر. ﭘﺎﻳﺎنﻧﺎﻣﻪ ﻛﺎرﺷﻨﺎﺳﻲ ارﺷﺪ، داﻧﺸﮕﺎه ﺗﺮﺑﻴﺖ ﻣﺪرس نور. 123 صفحه.
18
Abowei, J.F.N; Ezekie, E.N. and Hansen, U., 2012. Effects of water pollution on benthic macro fauna species composition in Koluama Area, Niger Delta Area, Nigeri. International Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 1, No. 2, pp: 140-146.
19
Banta, G.T.; Holmer, M.; Jensen, M.H. and Kristensen, E., 1999. Effects of two polychaete worms, Nereis diversicolor and Arenicola marina, on aerobic and anaerobic decomposition in sandy marine sediment. Aqua Microb Eco. Vol. 19, pp: 189-204.
20
Bouchard, R.W.J., 2004. Guide to aquatic macrinverteberates of the upper midewest. Water resources center. University of Minnesota. 208 p.
21
Currie D.R. and Small, K.J., 2004. Macrobentic community responses to long-term environmental change in an east Australian subtropical estuary. Estuarine Coastal and Shelf Science. Vol. 63, pp: 315-331.
22
Grey, J.S., 1981. The ecology of marine sediments, an introduction to the structure and function of benthic communities. Cambridge University Press. Cambridge. 127 p.
23
Gloeri, P. and Mrkvicka, A.C., 2015. New taxa of freshwater snails from Macedonia (Gastropoda: Hydrobiidae, Amnicolidae). Ecology Montenegrina. Vol. 3, pp: 13-18.
24
Heilskov, A.C. and Holmer, M., 2001. Effect of benthic fauna on organic matter mineralization in fish-farm sediment: importance of size and abundance. Journal of Marine Science. Vol. 58, pp: 427-434.
25
Montajami, S.; Hosseini, S.A.; Ghorbani, R. and Mehdizadeh, M., 2012. Investigation of some physicochemical characteristics of Farobroman river water by using benthic macroinvertebrates as biological indicator. World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 4, No. 6, pp: 645-650.
26
Narwani, A. and Mazumder, A. 2012. Bottom-up effects of species diversity on the functioning and stability of food webs. J of Animal Ecology. Vol. 81, No. 3, pp: 701-713.
27
Nybakken, J.W., 2001. Marine Biology: an ecological approach. Harper Collins College Publishers. 445 p.
28
Sanz-Lázaro, C. and Marín, A., 2011. Diversity patterns of benthic macrofauna caused by marine fish farming. Diversity. Vol. 3, pp: 176-199.
29
Saravnakumar, A.; Sesh Serebiah, J.; Thivakaran, G.A. and Rajkumar, M., 2007. Benthic Macrofaunal Assemblage in the Arid Zone Mangroves of Gulf of Kachchh-Gujarat. J of Ocean University of China. Vol. 6, No. 3, pp: 303-309.
30
Woźniczka, A., Gromisz, S. and Wolnomiejski, N., 2011. Hypania invalida (Grube, 1960), a polychaete species new for the southern Baltic estuarine area: The Szczecin Lagoon and the River Odra mout. Aquatic Invasions. Vol. 6, No. 1, pp: 39-46.
31
ORIGINAL_ARTICLE
تشخیص افتراقی سه گونه از شکم پایان خانواده Neritidae در مناطق بین کشندی جزیره خارگ (خلیج فارس) براساس بررسی ساختار سوهانک با استفاده از میکروسکوپ الکترونی نگاره
هدف از تحقیق حاضر، تشخیص تفاوت بین گونه ای سوهانک در سه گونه از شکم پایان خانواده Neritidae در مناطق بین کشندی جزیره خارگ توسط مطالعه سوهانک توسط میکروسکوپ نوری و الکترونی نگاره بود. نمونه برداری شکم پایان در زمستان 1394 و بهار 1395 (هر فصل یک بار) و از 5 ایستگاه در مناطق بین کشندی جزیره خارگ و عمق کم تر از یک متر انجام شد. نمونه ها بلافاصله فریز شده و به آزمایشگاه منتقل شدند. پس از بررسی ریخت شناسی، مواد آلی نمونه ها هضم و سوهانک جدا شده و توسط میکروسکوپ نوری و الکترونی مورد بررسی قرار گرفت. در مطالعه حاضر، 3 گونه از خانواده Neritidae شناسایی شد که شامل Nerita albicilla، Nerita adenensis و Nerita longiiبودند. نوع سوهانک در هر سه گونه ریپیدوگلوسان بود و تفاوت قابل ملاحظه ای بین تعداد و شکل دندان های سوهانک بین آن ها مشاهده نشد. نسبت طول صدف به طول سوهانک در N. longiiبیش ترین و در N. albicillaکم ترین بود که نشان دهنده کوچک بودن سوهانک در Nerita longii و بزرگ بودن آن در Nerita albicilla می باشد. بررسی سوهانک توسط میکروسکوپ الکترونی روش مناسبی برای مطالعه دقیق تر آن در شکم پایان می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_63715_6903d456d1a5f735be6b566563f3bfd0.pdf
2017-12-22
355
362
شکم پایان
سوهانک
شناسایی افتراقی
خلیج فارس
جزیره خارگ
میکروسکوپ الکترونی نگاره
فاطمه
علیرضایی
maral.alirezaie@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
AUTHOR
مریم
عیدی
maryameidi@gmail.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
LEAD_AUTHOR
آریا
اشجع اردلان
a_ashjaardalan@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، صندوق پستی:181-19735
AUTHOR
بیرامی، ن.؛ سیف آّبادی، ج. و علوی یگانه، م.، 1395. شناسایی ریختی گونه های جنس Nerita (رده شکم پایان خانواده Neritidae) در ناحیه جزر و مدی بندرلنگه، فصلنامه علمی-پژوهشی محیط زیست جانوری. دوره 8، شماره3، صفحه 87 تا 92.
1
حسین زاده صحافی، ه.؛ دقوقی، ب. و رامشی، ح.، 1379. اطلس نرم تنان خلیج فارس. موسسه تحقیقات شیلات ایران.
2
رضایی،ع.، 1381. تفاوت های الکترومیکروسکوپی 10 گونه از شکم پایان سواحل بندرلنگه و خلیج فارس با استفاده از رادولا. پایان نامه کارشناسی ارشد، بیوسیستماتیک جانوری، دانشگاه علوم فنون دریایی.
3
سرفراز، ع. و تیموری، م.، 1388. خلیج فارس براساس مطالعات باستان شناسی. باغ نظر. شماره 11، سال 6، صفحات 29 تا 52.
4
Alavi Yeganeh, M.S.; Beirami N.; Bahmani G. and Seyfabadi J., 2016. Size mass relationships for four marine nerite snails (Gastropoda: Neritidae) from the northern coast of Persian Gulf, Iran. Zoology and Ecology. Vol. 26, pp: 292-294.
5
Amini Yekta, F.; Kiabi, H.B.; Shokri, M.R. and Ashja Ardalan, A., 2013a. Abundance and species richness of intertidal gastropods in Qeshm Island, the Persian Gulf, before and after cyclone GONU (2007-2008). Journal of the Persian Gulf. Vol. 3, pp: 25-31.
6
Amini Yekta, F.; Izadi, S. and Asgari, M., 2012b. Distribution of rocky intertidal molluscs in Qeshm Island, the Persian Gulf. INOC-CNRS, International Conference on Land-Sea Interactions in the Coastal Zone Jounieh, Lebanon. pp: 140-145.
7
Asgari, M.; Yekta, F.A. and Izadi, S., 2012. Dominant intertidal crustacean and gastropod species in Qeshm Island, Iran, northern Persian Gulf. Marine Biodiversity Records. Vol. 5, pp: e87.
8
Asghari, S. and Ahmadi, M., 2012. Gastropods diversity and density before and after summer monsoon in the Iranian caostal waters of Oman Sea. Fisheries and Technology, first. Vol. 4, 2010 p.
9
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی و بررسی پراکنش اسفنج های جزیره لارک واقع در خلیج فارس
اسفنج ها جانورانی چندسلولی و متعلق به شاخه پوریفرا هستند و یکی از مهم ترین اجتماعات جانوران کفزی در خلیج فارس محسوب می شوند. این تحقیق در جزیره لارک در طی دو فصل زمستان1389 و تابستان1390 انجام گردید. در مجموع 6 ایستگاه برای نمونه برداری انتخاب شد. در هر ایستگاه سه بار نمونه برداری به طور تصادفی صورت پذیرفت. نمونه برداری با استفاده از کوادرات در مساحت 1×1 متر مربع انجام گرفت. پس از نمونه برداری و هضم مواد آلی در نمونه ها، اسپیکول ها جهت شناسایی اسفنج ها مورد بررسی قرار گرفتند و در مجموع 4 گونه شناسایی شدند. گونه های شناسایی شده در این مطالعه متعلق به رده بررسی پراکنش اسفنج ها نیز با استفاده از روش ترانسکت ها در اعماق 0، 5، 10، 15 و 20 متری دریا صورت گرفت. اسفنج های شناسایی شده متعلق به رده Demospongiae و راسته های Haplosclerida، Agelasida، Dictyoceratida و خانواده های Irciniidae، Niphatidae، AgelasidaeوChalinidae بودند. گونه های شناسایی شده شامل Haliclona caeralea ، Agelas dilatata، Niphates furcate و Ircinia sp. بودند. که فراوان ترین آن ها گونه Agelas dilatataتعیین گردید. تغییرات فصلی در فراوانی تمام گونه های یاد شده موثر بود به طوری که بیش ترین فراوانی در فصل تابستان مشاهده گردید.
http://www.aejournal.ir/article_57246_6e9637c8d308a9cf07a7eb55e196a39d.pdf
2017-12-22
363
370
اسفنج
اسپیکول
جزیره لارک
خلیج فارس
ژاله
خوشخو
zhaleh_khoshkhoo@yahoo.com
1
گروه شیلات, دانشکده علوم و فنون دریایی, دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال
LEAD_AUTHOR
بلوچ، م ،.1382. جانورشناسی 1. انتشارات دانشگاه پیام نور تهران .202 صفحه.
1
درخشش، ن.؛ سواری، ا.؛ دوست شناس، ب.؛ دهقان مدیسه ،س. و دورقی، ع. م ،.1392. بررسی میزان توده زنده تولید در اسفنج های دریایی از خانواده Haliclonidae در مناطق احداث سازه های مصنوعی واقع در شمال غربی خلیج فارس. اقیانوس شناسی. سال 8، شماره 14، صفحات 77 تا 84.
2
روشن، ا.؛نبوی،س.م.ب.؛سالاری علی آبادی،م.ع.؛سواری،ا.وذوالقرنین،ح.، 1396.معرفی گونه Chondrilla sp PG A 2015از آب های ساحلی بوشهر اولی جنوبی با استفاده از ساختار مورفولوژی و روش ژنتیکی. محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 1، صفحات 179 تا 188.
3
سلامات، ن. و درخشش، ن ،.1392. مطالعه هیستولوژیک دو گونه اسفنج دارای اسپیکول و فاقد اسپیکول در رده Demospongiae. نشریه فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان. سال 1، شماره 2، صفحات 56 تا 73.
4
مقصودلو، ع.و.؛ شکری، م.ر. و ممتازی، ف ،.1393. تاکسونومی و جغرافیای زیستی اسفنج های زیرکشندی خلیج فارس (کیش ،لارک، نایبند) تخمینی از تنوع گونه های آلفا و بتا. اقیانوس شناسی. سال 11، شماره 19، صفحات 79 تا 89.
5
کاظم پور، ش.؛ اشجع اردلان، ا. و عیدی، م ،.1396. شناسایی اسفنج های ناحیه بین جزر و مدی جزیره هرمز واقع در خلیج فارس. محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 1، صفحات 189 تا 194.
6
مرامی زنوز، ش.؛ اشجع اردلان، ا. و عیدی، م.،1396. تشخیص افتراقی پنج گونه از اسفنج های مناطق بین کشندی جزیره هرمز، خلیج فارس بر اساس بررسی ساختار اسپیکول با استفاده از میکروسکپ الکترونب نگاره. زیست شناسی دریا. جلد 9، شماره 3، صفحات 69 تا 78.
7
Alessi, S.A.; Hunt, H.D. and ower, A.S.B., 1996.Hydrographic data from the U.S.Naval.ocean graphi office:Persian Gulf.
8
Barnes, R.D., 1987. Invertebrate Zoology, 5th edition. Saunders College Publishing, USA. 743 p.
9
Campbell, A. and Dawes, J., 2005. Encylopedia of underwater Life, first edition. Oxford University Press,London. PP: 20-21.
10
Derek, P.; Tittensor, Camilo, M.; Walter, J.; Heike, K.L.; Daniel, R.; Edward, V.B. and Boris, W., 2010. Global patterns and predictors of marine biodiversity across taxa. Nature. Vol. 3, PP: 34-76.
11
Erpenbeck, D. and Worheide, G., 2007. On the molecular phylogeny of sponges (Porifera). Zootaxa. Vol. 1668, PP:107-126.
12
Hooper, J.N.A., 2000. Guide to Sponge Collection and Identification, Queensland Meuseum. PP: 1-138.
13
Khoshkhoo, Z.; Nazemi, M.; Motalebi, A.; Mahdabi, M.; Ardalan, A.A. and Matin, R.H., 2012. First record of Siliceous and Calcareous sponge from Larak Island, Persian Gulf- Iran. Middle-East Journal of Scientific Research. Vol. 11, pp: 887-893.
14
Kinne, O., 1970. Temperature: invertebrate. Marine Ecology. Vol. 1, PP: 407- 514.
15
Nazemi, M.; Rezvani Gilkolai, F.; Lakzaei, F.; Pishvarzad,F. and Ahmadzadeh, O., 2015. First record on the distribution and abundance of three sponge species from Hormoz Island, Persian Gulf-Iran. Biological Forum-An International Journal. Vol. 7, No. 2, pp: 72-78.
16
Reitner, J. and Mehl, D., 1996. Monophyly of the Porifera. Verhandlungen des Naturwissenschaftlichen Vereins in Hamburg. Vol. 36. PP: 5-32.
17
Reiswig, H.M. and Mackie, G.O., 1983. Studies on hexactinellid sponges. The taxonomic status of Hexactinellida within the Porifera. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Vol. 301, PP: 419-428.
18
Sadeghi, P.; Savari, A.; Yavari, V. and Devin, M.L., 2008. First record of sponge distribution in the Persian Gulf (Hengam Island, Iran). Pakistanis Journal of Biological Science. Vol. 11, pp: 2521-2524.
19
Soest, V. and Beglinger, E.J., 2008. Tetractinellida and Merida sponges of the Sultanta of Oman. Journal of Zoology. Vol. 82, pp: 749-779.
20