ORIGINAL_ARTICLE
پیشبینی زیستگاه های مطلوب پلنگایرانی (Panthera pardus saxicolor) در منطقه حفاظت شده کوهبافق
پلنگایرانی (Panthera pardus saxicolor) یکی از گونههای در معرض خطر انقراض است که جمعیت و دامنه انتشار آن کاهش یافته است. به منظور مدلسازی مطلوبیت زیستگاه پلنگ با استفاده از نقاط حضور، از روش بیشینه آنتروپی (MaxEnt) بهرهگیری شد. لایههای اطلاعاتی تهیه شده بهعنوان متغیرهای مؤثر بر حضور گونه شامل درصد شیب، جهت جغرافیایی، ارتفاع، اشکال توپوگرافی، پوششگیاهی، منابع آبی، متغیرهای توسعه انسانی و تراکم طعمه هستند. نتایج بررسی نشان داد که حدود 21/5 درصد از وسعت منطقهحفاظتشده، زیستگاه مطلوبی برای پلنگایرانی است. هم چنین براساس نقشه مطلوبیت زیستگاه، پلنگایرانی ارتفاع 2200-1400 متر از سطح دریا و شیب 10 تا 70 درصد را ترجیح میدهد. بهعلاوه متغیرهای تراکم طعمه، منابع آب، روستاهای خالی از سکنه و مناطق کوهستانی از عوامل مؤثر بر حضور گونه میباشند. ارزیابی مدل باسطح زیر منحنی ROC برابر 0/982، نشاندهنده قدرت تشخیص بسیار عالی میباشد. زیستگاههای مطلوب یک پارچه پلنگ در دو منطقه ارسستان و پنجدرخت واقع شده که بیش ترین آن در منطقه امن محدوده مورد تحقیق قرار دارد. جلوگیری از احداث جاده گزوئیه در محدوده امن و زیستگاههای مطلوب پلنگ و انجام مطالعات تکمیلی برای تعیین کریدورها و جابجایی پلنگ به خارج از منطقه حفاظت شده از مهمترین پیشنهادات این پژوهش بود.
http://www.aejournal.ir/article_60484_2cc99563a5bce5bc150411d165d9c89e.pdf
2018-03-21
1
8
پلنگایرانی
بیشینه آنتروپی
مطلوبیت زیستگاه
منطقه حفاظت شده کوه بافق
جلیل
سرهنگ زاده
jsarhangzadeh@yazd.ac.ir
1
گروه محیط زیست، دانشگاه یزد، صندوق پـستی: 741- 89195
LEAD_AUTHOR
علی اکبر
کریمیان
akarimian@yazd.ac.ir
2
گروه مرتع و آبخیزداری، دانشگاه یزد، صندوق پـستی: 741- 89195
AUTHOR
حسن
اکبری
haenv@yahoo.com
3
گروه محیط زیست، دانشگاه یزد، صندوق پـستی: 741- 89195
AUTHOR
امیدی، م.؛ کابلی، م.؛ کرمی، م.؛ سلمانماهینی، ع. و حسن زادهکیابی، ب.، 1389. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه پلنگایرانی (Panthera pardus saxicolor) روش تحلیل عامل آشیان بوم شناختی (ENFA) در پارک ملی کلاهقاضی. فصلنامه علوم و تکنولوژی محیطزیست. دوره 12، شماره 1، صفحات 137 تا 148.
1
رضایی خوزانی، ع.؛ کابلی، م.؛ اشرفی، س. و اکبری، ح.، 1394. بررسی هم پوشانی رژیم غذایی یوزپلنگ آسیایی و پلنگایرانی در منطقه حفاظت شده کوهبافق. دومین همایش یافتههای نوین در محیط زیست و اکوسیستمهای کشاورزی. تهران. پژوهشکده انرژیهای نو و محیطزیست دانشگاه تهران.
2
سرهنگ زاده، ج.؛ ایران نژادپاریزی، م.؛ مصلح آرانی، ا. و اکبری، ح.، 1395. بررسی وضعیت کمی و کیفی و ژنتیکی و شرایط استقرار رویشگاههای گیاه ارس در منطقه حفاظت شده کوهبافق. شرکت سنگ آهن مرکزی ایران.
3
سرهنگ زاده، ج.؛ یاوری، ا.؛ همامی، م.؛ جعفری، ح. و شمس اسفندآباد، ب.، 1392. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش Ovis Orientalis با استفاده از رویکرد تحلیل عامل آشیان بومشناختی در منطقه حفاظت شده کوهبافق. مجلـه پـژوهشهـای محیط زیست. شماره 8، صفحات 69 تا 82.
4
همامی، م.؛ اسمعیلی، س. و سفیانیان، ع.،1394. پیشبینی پراکنش یوزپلنگ آسیایی، پلنگایرانی و خرس قهوهای در پاسخ به متغیرهای محیطی در استان اصفهان. بومشناسی کاربردی. دوره ۴، جلد ۴ شماره ۱۳، صفحات ۵۱ تا ۶۴.
5
عرفانیان، ب.؛ میرکریمی، س.؛ سلمان ماهینی، ع. و رضایی، ح.، 1389. نقش روگذر و زیرگذر در جبران آثار منفی تکهتکه شدن زیستگاهها، مطالعه موردی: پلنگ پارک ملی گلستان. محیطزیست و توسعه. سال 1، شماره 1، صفحات 35 تا 42.
6
قدوسی، آ.؛ عشایری، د؛. مشیری، ح؛. قدیریان، ط؛. خالقی حمیدی، ا؛. قشقایی، ع؛. حمزهپور،م؛. ظهرابی، ح.؛ جولایی، ل. و خوروزیان، ا.، 1387. پروژه پلنگایرانی. گزارش سالیانه 87-1386. انجمن طرح سرزمین.
7
Bailey, J.A., 1984. Principles of wildlife management. New York, NY: John Wiley and. Sons. 373 p.
8
Caughley, G. and Sinclair, A.R.E., 1994. Wildlife Ecology and Management. Blackwell Science, Oxford, UK. 334 p.
9
Beauvais, G.P.; Keinath D.A.; Hernandez P.; Master L.; Thurston R., 2006. Element Distribution Modeling. University of Wyoming.42 p.
10
Brito, J.C.; Acosta, A.L.; Álvares, F. and Cuzin, F., 2009. Biogeography and conservation of taxa from remote regions: An application of ecological-niche based models and GIS to North-African canids. Biological Conservation. Vol. 142,
11
pp: 3020-3029.
12
Ceballos, G. and Ehrlich, P.R., 2002. Mammal population losses and the extinction crisis. Science. Vol. 296, pp: 904-907.
13
Doco, T., 2007. Modeling of species geographic distribution for assessing present needs for the ecological networks: case study of Fuji region and Tanzawa region, Japan. Degree of Master. International Institue for Geo-Information Science and Earth Observation Enschede. pp: 1-112.
14
Erfanian, B.; Mirkarimi, S.H.; Mahini, A.S. and Rezaei, H.R., 2013. A Presence-Only Habitat Suitability Model for Persian Leopard Panthera pardus Saxicolor in Golestan National Park, Iran. Wildlife Biology. Vol. 19, pp: 170-178.
15
Farhadinia, M.S.; Ahmadi, M.; Sharbafi, E.; Khosravi, S.; Alinezhad, H. and Macdonald, D.W., 2015. Leveraging trans-boundary conservation partnerships: Persistence of Persian leopard (Panthera pardus saxicolor) in the Iranian Caucasus. Biological Conservation. Vol. 191, pp: 770-778.
16
Fahrig, L. and Merriam G., 1985. Habitat patch connectivity and population survival. Ecology. Vol. 66,
17
pp: 1762-1768.
18
Gavashelishvili, A. and Lukarevskiy, V., 2008. Modelling the habitat requirements of leopard Panthera pardus in west and central Asia. Journal of Applied. Vol. 45, pp: 579-588.
19
Geoffrey, M.; Carter, E.D.S. and David Breininger,
20
R., 2006. A rapid approach to modeling species-habitat relationships, Biological Conservation. Vol. 127, No. 2,
21
pp: 237-244.
22
Gibbs, J.P., 1998. Amphibian movements in response to forest edges, roads, and streambeds in southern New England. Journal of Wildlife Management. Vol. 62, pp: 584-589.
23
Gormley, A.; Forsyth, D.; Griffioen, P.; Lindeman, M.; Ramsey, D.; Scroggie, M. and Woodford, L., 2011. Using presence-only and presence-absence data to estimate the current and potential distributions of established invasive species. Journal of Applied Ecology. Vol. 48, pp: 25-34.
24
Groves, C.R., 2003. Defining a Conservation Blueprint. Island Press, Washington, DC.
25
IUCN. 2014. The IUCN Red List of Threatened Species. Version 2014.2. .
26
Maiorano, L.; Falcucci, A. and Boitani, L., 2006. Gap analysis of terrestrial vertebrates in Italy: priorities for conservation planning in a human dominated landscape. Biol. Conserv. Vol. 133, pp: 455-473.
27
Morato, R.G.; Ferraz, K.M.P.Md.B.; de Paula R.C. and Campos, C.Bd., 2014. Identification of Priority Conservation Areas and Potential Corridors for Jaguars in the Caatinga Biome. Brazil. PLoS One 9, e92950.
28
Parra-Quijano, M.; Iriondo, J.M. and Torres, E., 2012. Improving representativeness of genebank collections through species distribution models, gap analysis and ecogeographical maps. Biodivers Conserv. Vol. 21, pp: 79-96.
29
Peterson, A.T.; Papes, M. and Eaton, M., 2007. Transferability and model evaluation in ecological niche modeling: A comparison of GARP and Maxent. Vol. 30,
30
pp: 550-560.
31
Phillipes, S.J., 2012. A brief tutorial on Maxent, versions.
32
3.3.3. Available online: http://www.cs. princeton.edu /~schapire/maxent/.
33
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological Modelling. Vol. 190, pp: 231-259.
34
Phillipes, S.J.; Dudík, M. and Schapire, R.E., 2004. A maximum entropy approach to species distribution modeling. In Proceedings of the 21st International Conference on Machine Learning; ACM Press: NewYork, USA. pp: 655-662
35
Phillips, S.J.; Dudik, M.; Elith, J.; Graham, C.H.; Lehmann, A.; Leathwick, J. and Ferrier, S., 2009. Sample selection bias and presence-only distribution models: implications for background and pseudo-absence data. Ecological Applications. Vol. 19, pp: 181-197.
36
Rabinowitz, A. and Zeller, K.A., 2010. A range-wide model of landscape connectivity and conservation for the jaguar, Panthera onca. Biol Conserv. Vol. 143, pp: 939-945.
37
Reh, W. and Seitz, A., 1990. The influence of land use on the genetic structure of populations of the common frog. Biological Conservation. Vol. 54, pp: 239-249.
38
Ripple, W.J.; Estes, J.A.; Beschta, R.L.; Wilmers, C.C.; Ritchie, E.G.; Hebblewhite, M.; Berger, J.; Elmhagen, B.; Letnic, M.; Nelson, M.P.; Schmitz, O.J.; Smith, D.W.; Wallach, A.D. and Wirsing, A.J., 2014. Status and ecological effects of the world’s largest carnivores.
39
Science 343:151.
40
Sarhangzadeh, J.; Akbari, H. and Shams Esfandabad,
41
B., 2015. Ecological niche of the Asiatic Cheetah (Acinonyx jubatus venaticus) in the arid environment of Iran (Mammalia: Felidae). Zoology in the Middle East. Vol. 61, No. 2, pp: 109-117.
42
Sarhangzadeh, J.; Yavari, A.; Hemami, M.; Jafari, H. and Shams Esfandabad, B., 2013. Habitat suitability modeling for wild goat (Capra aegagrus) in a mountainous arid area, central Iran. Caspian J. Env. Sci. Vol. 11, No. 1, pp: 41.
43
Swanepoel, L.H.; Lindesy, P.; Somers, M.J.; Hoven, W. and Dalerum, W., 2013. Extent and fragmentation of suitable leopard habitat in South Africa. Vol. 16, pp: 41-50.
44
Swanepoel L.H.; Somers, M.J.; Hoven, W.; Schiess Meier, M.; Owen, C.; Snyman, A.; Martins, Q.; Senekal, C.; Camacho, G.; Boshoff, W. and Dalerum, F.,2015. Survival rates and causes of mortality of leopards Panthera pardus in southern Africa. Oryx. Vol. 49, No. 4, pp: 595-603.
45
Taghdisi, M.; Mohammadi, A.; Nourani, E.; Shokri, S.; Rezaei, A. and Kaboli, M., 2013. Diet and habitat use of the endangered Persian leopard (Panthera pardus saxicolor) in northeastern Iran. Vol. 37, pp: 554-561.
46
Wilson, P.J. and Provan, J., 2003. Effect of habitat fragmentation on levels and patterns of genetic diversity in natural populations of peat moss Polytrichum commone. Proceedings of the Royal Society Series B: Biological Sciences. Vol. 270, pp: 881-886.
47
Yost, A.C.; Petersen, S.L.; Gregg, M. and Miller, R., 2008. Predictive modeling and mapping sage grouse (Centrocercus urophasianus) nesting habitat using Maximum Entropy and a long-term dataset from Southern Oregon. Ecol. Inform.
48
Vol. 3, pp: 375-386.
49
ORIGINAL_ARTICLE
مدل سازی مطلوبیت زیستگاه آهو (Gazella subgutturosa) در پارک ملی گلستان
برنامه ریزی بهمنظور حفاظت از گونههای حیات وحش بدون آگاهی از نیازهای بومشناختی این گونه ها و نحوه ارتباط آنها با زیستگاه امکانپذیر نیست. مدل های مطلوبیت زیستگاه که امروزه کاربرد بسیاری در پژوهش های بومشناسی یافته اند، با استفاده از نرم افزارهای سامانه اطلاعات جغرافیایی و آماری انتشار یکگونه را با متغیرهای محیط زیستی مرتبط می سازند. تهدیدات و تعارضات انسانی موجود در پارک ملی گلستان گونه آهو را بهعنوان گونه ای آسیب پذیر در فهرست سرخ IUCN، از برخی زیستگاههای مناسب جدا کرده و محلهای حضور جمعیتهای اینگونه را در برخی مناطق محدود نموده است. بهمنظور مدلسازی مطلوبیت زیستگاه آهو، از روش مبتنی بر داده های فقط حضور و تجزیهوتحلیل عاملی آشیان بومشناختی استفادهشده است. در این مطالعه از نقاط حضور گونه بهعنوان متغیر وابسته و از هشت متغیر محیطی ازجمله نقشه طبقات ارتفاعی، نقشه شیب، نقشه جهت، نقشه موقعیت روستاها، نقشه جادههای آسفالت و خاکی، نقشه موقعیت پاسگاههای محیط بانی، نقشه منابع آبی و آبراههها بهعنوان متغیر مستقل استفاده شد. براساس مقادیر تخصصگرایی، مهمترین عوامل مؤثر در آشیان بومشناختی گونه مورد مطالعه درصد شیب، فاصله از جاده و فاصله از پاسگاه های محیط بانی است. نقشه مطلوبیت زیستگاه تهیه شده در این مطالعه برای گونه آهو نشان می دهد که زیستگاه مطلوب آهو در پارک ملی گلستان بسیار محدود و متمرکز بر حاشیه جاده میانگذر پارک گردیده است.
http://www.aejournal.ir/article_66090_68fa7276d62389cebcf71c1ffa15bbe9.pdf
2018-03-21
9
18
آهو
مدلسازی مطلوبیت زیستگاه
تحلیل عاملی آشیان بومشناختی
پارک ملی گلستان
میثم
مددی
maysam.mm65@chmail.ir
1
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی:15739-49138
LEAD_AUTHOR
فرزاد
اکبر نژاد
farzad1511@gmail.com
2
اداره کل حفاظت محیط زیست استان گلستان
AUTHOR
سلیمان
قربان زاده
ghorbanzadeh.solayman@gmail.com
3
اداره کل حفاظت محیط زیست استان گلستان
AUTHOR
اسماعیل پور، ی.؛ شریفی، م.؛ قاسمی، ص. و کرمی، پ.، 1395. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه آهوی ایرانی در منطقه شکار و تیراندازی ممنوع قراویز به روش ENFA. مجله محیط زیست طبیعی. دوره 69، شماره 9، صفحات 329 تا 346.
1
اکبری هارونی، ح.؛ بهروزی راد، ب. و حسن زاده کیایی، ب.، 1387. بررسی رضایت مندی زیستگاه آهو در منطقه حفاظت شده کالمند بهادران استان یزد. مجله محیط شناسی. دوره 34، شماره 46، صفحات 113 تا 118.
2
بخشی، ح.؛ حسنی، م.؛ سلمان ماهینی، ع. و وارسته مرادی، ح.،1394. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه شوکا Capreoluscapreolus با استفاده از روش تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی در پارک ملی گلستان. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 7، شماره 4، صفحات 31 تا 42.
3
درویشصفت، ع.، 1385. اطلس مناطق حفاظتشده. انتشارات دانشگاه تهران. 159 صفحه.
4
فراشی، آ.؛ کابلی، م. و مومنی، ا.، 1389. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه بز و پازن (Capra aegagrus) به کمک روش تحلیل فاکتوری آشیان بومشناختی (ENFA) در پارک ملی کلاه قاضی استان اصفهان. نشریه محیط زیست طبیعی. دوره 63، شماره 1، صفحات 63 تا 73.
5
مجنونیان، ه.؛ زاهد، ب.؛ حسن زاده کیایی، ب.؛ فرهنگ دره شوری، ب. و گشتاسب میگونی، ح.، 1378. پارک ملی گلستان (ذخیره گاه زیستکره). سازمان حفاظت محیطزیست. تهران.
6
همامی، م.؛ حاضری، ف. و خواجه الدین، ج.، 1388. استفاده از جوامع گیاهی توسط آهوی ایرانی (Gazellasubgutturosa) در پناهگاه حیات وحش موته. مجله علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی. سال 13، شماره 48، صفحات 427 تا 435.
7
Bayan, T.L. and Metaxas, A., 2007. Predicting suitable habitat for deep – water gorgonian corals on the Atlantic and Pacific Continentale Margins of North America. Mariane Ecology Progress Series. Vol. 330, pp: 113-126.
8
Hirzel, A., 2004. Biomapper 3 user, s manual.
9
Hirzel, A.; Hausser, J.; Chessel, D. and Perrin, N.,2002. Ecological Niche Factor Analysis: how to compute habitat suitability maps without absence data. Ecology. Vol. 83, pp: 2027-2036.
10
Hirzel, A.; Le Lay, G.; Helfer, V.; Randin, C. and Guisan, A., 2006. Evaluating the ability of habitat suitability models to predict species presences. Ecological Modeling. Vol. 199, pp: 142-152.
11
Jepsen, J.U.; madsen, A.B. and karlsson, M.D., 2005. Predicting distribution and density of European badger (Meles meles) setts in Denmark. Biodiversity and Conservation. Vol. 14, pp: 3235-3253.
12
Levins, R., 1966. The strategy of model building in population ecology. American scientist. Vol. 421, pp: 421-431.
13
Olivier, F. and Wotherspoon, S.J., 2006. Modeling habitat selection using presence-only data: Case study of a colonial hollow nesting bird, the snow petrel. Ecological Modeling. Vol. 195, pp: 187-204.
14
Pearson, R.G., 2007. Species’ distribution modeling for conservation educators and practitioners, American Museum of Natural History, Available at http:// ncep.amnh.org.
15
Shams Esfandabad, B.; Karami, M.; Hemami, M.R. and Sadough, M.B., 2010. Habitat associations of wild goat in central Iran: implications for conservation. Eur J Wildl Res. Vol. 56, pp: 883-894.
16
Tremblay, A.M. and Dibb, A.D., 2002. Modelling and Restoration of Bighorn sheep habitat within and adjacement to Koo twnay national park, British Columbia. Ecological Modelling. Vol. 163, pp: 251-264.
17
Unger, D.E., 2008. Ecological Niche Factor Analysis to Determine Habitat Suitability of a Recolonizing Carnivore. 6th southern Forestry and Natural resources GIS Conference.
18
Weinberg, P.; Jdeidi, T.; Masseti, M.; Nader, I.; de Smet, K. and Cuzin, F., 2008. Capra aegagrus. In: 2008 IUCN Red List of Threatened Species.
19
Wiens, A., 1999. Spatial scaling in ecology. Journal of Functional Ecology. Vol. 3, pp: 385-397.
20
ORIGINAL_ARTICLE
پیش بینی پراکنش بالقوه گربه وحشی Felis silvestris با استفاده از الگوریتم حداکثر انتروپی در ایران
گربه وحشی Felis silvestris یکی از 8 گونه گربه سان کشور است و به استثنای جنگل های واقع در شیب های شمالی رشته کوه های البرز در سایر مناطق کشور مشاهده شده است. از آن جا که اطلاعات چندانی از وضعیت این گونه و زیستگاه های آن در دست نیست، از این رو مدل سازی پراکنش گونه در کشور با استفاده از الگوریتم ماکزیمم انتروپی (MaxEnt) که نوعی رویه مدل سازی وابسته به نقاط صرفاً حضور است انجام شد. نقشه پراکنش بالقوه گربه وحشی و فاکتورهای موثر تاثیرگذار بر پراکنش گونه با استفاده از 144 نقطه حضور گربه وحشی همراه با 10 متغیر محیط زیستی به دست آمد.کارایی مدل به وسیله سطح زیر منحنی (ROC) ارزیابی شد. مقدار0/816= AUCبرای دادههای تعلیمی نشان داد که مدل دارای قابلیت پیش بینی خوبی برای تعیین زیستگاه های بالقوه گربه وحشی است. هم چنین براساس نتایج فراکافت جک نایف، از بین 10 متغیر مورد مطالعه، کاربری اراضی، شیب و ارتفاع به ترتیب فاکتورهای نخست موثر بر پراکنش گربه وحشی در فلات ایران، شناسایی شدند. منحنی پاسخ متغیرکاربری اراضی نشان داد زمین های کشاورزی، مناطق خشک و بیابانی محدودکننده حضور گربه وحشی در مناطق مختلف هستند هم چنین مدل نشان داد شیب های شمالی البرز پتانسیل لازم برای حضور گربه وحشی را دارند، لذا مطالعه سیستماتیک زیستگاهی به منظور شناخت جزئیات نیازهای زیستگاهی گونه، هم چنین برنامهریزی حفاظتی برای جمعیت های گربه وحشی در مناطق شناسایی شده بهوسیله مدل با اولویت زیستگاه های به دور از سکونتگاه های انسانی برای حفاظت از جمعیت های خالص گربه وحشی توصیه میشود.
http://www.aejournal.ir/article_66419_92af3336db18fcb9dc2f7d38ecb94e77.pdf
2018-03-21
19
24
مدل سازی زیستگاه
مکسنت
گربه وحشی
ایران
سیده مرضیه
موسوی
mrmussavi@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده محیط زیست و انرژی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم وتحقیقات، تهران، ایران، صندوق پستی: 775-14515
LEAD_AUTHOR
حمیدرضا
رضایی
hamid.r.rezaei@gmail.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی:15739-49138
AUTHOR
سعید
نادری
ssnadery@gmail.com
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان
AUTHOR
ضیایی، ه.، 1387. راهنمای صحرایی پستانداران ایران. انتشارات کانون آشنایی با حیات وحش. چاپ دوم، ایران، تهران، 423 صفحه.
1
Anderson, R.P.; Lew, D. and Townsend Peterson,A., 2001. Evaluating predictive models of species’ distributions modeling: Criteria for selecting optimal models. Ecological modeling. Vol. 162, pp: 211-232.
2
Driscoll, C.A.; Menotti Raymond, M.; Roca, A.L.; Hupe, K.; Johnson, W.E.; Geffen, E.; Harley, E.;Delibes, M.; Pontier, D.; Kitchener, A.C.; Yamaguchi, N.; O’Brien, S.J. and MacDonald, D., 2007. The near eastern origin of cat domestication. Science Magazine, Reports. Vol. 317, pp: 519-523.
3
Elith, J.; Phillips, S.J.; Hastie, T.; Dudik, M.; Chee, Y. and Yates, C.J., 2010. A statistical explanation of MaxEnt for ecologists. Diversity and distributions. Vol. 17, pp: 43-57.
4
Fahrig, L. and Merriam, G., 1994. Conservation of fragmented populations. Conserv. Biol. Vol. 8, pp: 50-59.
5
Farhadinia, M.F.; Ahmadi, M.; Sharbafi, E.; Khosravi, S.; Alinezhad, H. and Macdonald, D.M., 2015. Leveraging trans-boundary conservation partnerships: Persistence of Persian leopard (Panthera pardus saxicolor) in the Iranian Caucasus. Biological Conservation. Vol. 191, pp: 770-778.
6
Guisan, A. and Zimmermann, N.E., 2000. Predictive habitat distribution models in ecology. Ecological Modelling. Vol. 135, pp: 147-186.
7
Ghoddousi, A.; Hamidi, A. and Ghadirian, T., 2016. The Status of wildcat in Iran: A Crossroad of Subspecies? Cat News Special Issue. Vol. 10, pp: 60-63.
8
Heshmati, G.A., 2007. Vegetation characteristics of four ecological zones of Iran. International Journal of Plant Production. Vol. 1, pp: 2, pp: 215-224.
9
Hijmans, R.J.; Cameron, S.E. and Parra, J.L., 2005. Very high resolution interpolated climate surfaces for global land areas. International J of Climatology. Vol. 25, pp: 1965-1978.
10
Ingberman, B.; Fusco Costa, R. and Monteiro Fiho, E.L.A., 2016. A Current Perspective on the Historical Geographic Distribution of the Endangered Muriquis (Brachyteles spp.): Implications for Conservation. PLoS ONE 11(3): DOI: 10.1371/journal.pone.0150906
11
IUCN. 2015. Felis silvestris. Available at http://www. iucnredlist.org. (Accessed 2014-04-20)
12
Lay, D.M., 1967. A study of the mammals of Iran: resulting from the street expedition. Field Museum of Natural History. Vol. 54, 308 p.
13
Mwabvu, T. and Schoeman, M.C., 2016. Little overlap in suitable habitat niches between three species of a southern African millipede genus, Spirostreptus Brandt 1833 (Diplopoda,Spirostreptida, Spirostreptidae). African Journal of Ecology. DOI: 10.1111/aje.12274.
14
Monterroso, P.; Brito, J.C.; Ferreras, P. and Alves, P.C., 2009. Spatial ecology of the European wildcat in a Mediterranean ecosystem: dealing with small radio tracking datasets in species conservation. J of Zool. Vol. 279, pp: 27-35.
15
Nowell, K. and Jackson, P., 1996. Wild cats: Status survey and conservation action plan. IUCN, Gland, Switzerland.
16
O’Brien, J.; Devillard, S.; Say, L.;Vanthomme, H.; Leger, F.; Ruette, S. and Pontier, D., 2009. Preserving genetic integrity in a hybridizing world: are European Wildcats (Felis silvestrissilvestris) in eastern France distinct from sympatric feral domestic cats? Biodivers Conser. DOI 10.1007/s10531-009-9592-8.
17
Pierpaoli, M.; Biro, Z.S.; Herrmann, M.; Hupe, S.K.; Fernandes, M.; Ragni, B.; Szemethy, L. andRandi, E., 2003. Genetic distinction of wildcat (Felis silvestris) populations in Europe, and hybridization with domestic cats in Hungary. Molecular Ecology. Vol. 12, pp: 2585-2598.
18
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological Modeling. Vol. 190, pp: 231-259.
19
Ragni, B., 1978. Observations on the ecology and behavior of the wildcat (Felis silvestris Schreber, 1777) in Italy. Carniv. Genet. Newsl. Vol. 3, pp: 270-274.
20
Sunquist, M. and Sunquist, F., 2002. Wild cats of the world. The University of Chicago Press. Chicago.
21
Sunquist, M. and Sunquist, F., 2014. The Wild Cat book. The University of Chicago Press. Chicago.
22
Say, L.; Devillard, S.; Leger, F.; Pontier, D. and Ruette, S., 2012. Distribution and spatial genetic structure of European wildcat in France. Animal Conservation. Vol. 15, pp: 18-27.
23
Sarhangzadeh, J.; Akbari, H. and Shams Esfandabad, B., 2015. Ecological nich of Asiatic Cheetah (Acinonyx jubatus venaticus) in the arid environment of Iran (Mammalia: Felidae). Zoology in the Middle East, online.
24
Sanderson, E.W.; Jaiteh, M. and Levy, M.A., 2002. The human footprint and the last of the wild. Bioscience. Vol. 52, pp: 891-904.
25
ORIGINAL_ARTICLE
برآورد تمایل مردم بومی حاشیه ذخیره گاه زیست کره گنو به منظور حمایت مالی از گونه های پستاندار بزرگ جثه
پژوهش حاضر به منظور برآورد تمایل به پرداخت مردم بومی اطراف ذخیره گاه زیست کره گنو در استان هرمزگان به منظور حمایت مالی از گونه های پستاندار بزرگ جثه در خطر انقراض در این منطقه تحت حفاظت به منظور تعیین ارزش حفاظتی این گونه ها انجام شده است. در این مطالعه، تعداد 150 خانوار بومی در استان هرمزگان که در مجاورت زیستگاه منطقه حفاظت شده و ذخیره گاه زیست کره گنو اقامت داشتند با روش نمونه گیری تصادفی ساده انتخاب و چهره به چهره مصاحبه شدند. ابزار گردآوری داده ها، پرسشنامه ای شامل: مشخصات جمعیت شناسی و سوالات تمایل به پرداخت افراد برای حمایت مالی از گونه های پستاندار درشت جثه در منطقه بوده است. پس از جمع آوری داده ها، نتایج با استفاده از نرم افزارهای SPSS نسخه 21 و اقتصاد سنجی Eviews نسخه 8، تجزیه و تحلیل شدند. یافته های پژوهش نشان داد که 78 درصد از افراد مورد مطالعه، تمایل به پرداخت مبلغی برای حمایت مالی از گونه های پستاندار درشت جثه در این منطقه را دارند. از سویی دیگر نتایج نشان داد که متوسط تمایل به پرداخت ماهانه و سالانه هر خانوار بومی برای حمایت مالی از گونه های حیاتوحش پستاندار درشت جثه، به ترتیب معادل با 53416/97 و 641003/7 ریال است. براساس نتایج مدل رگرسیونی لوجیت برآورد شده، متغیرهای تحصیلات، عضویت در سازمان های زیست محیطی، شناخت گونه و میزان پیشنهاد از عوامل تأثیرگذار بر میزان تمایل به پرداخت افراد بومی برای حمایت از گونه های پستاندار درشت جثه در منطقه حفاظت شده گنو است.
http://www.aejournal.ir/article_66448_c4acf387e39fd129ff2ee13259aeaf59.pdf
2018-03-21
25
34
تمایل به پرداخت
ارزش گذاری مشروط
گونه در خطر انقراض
منطقه حفاظت شده گنو
استان هرمزگان
امید
طبیعی
tabiee@iaua.ac.ir
1
گروه منابع طبیعی، واحد ارسنجان، دانشگاه آزاد اسلامی، ارسنجان، ایران
LEAD_AUTHOR
رقیه
جوادی
javadir556@gmail.com
2
گروه منابع طبیعی، واحد ارسنجان، دانشگاه آزاد اسلامی، ارسنجان، ایران
AUTHOR
امیرنژآد، ح.، 1386. برآورد ارزش حفاظتی پارک ملی گلستان با استفاده از تمایل به پرداخت افراد. مجله اقتصاد کشاورزی. دوره 1، شماره 3، صفحات 175 تا 188.
1
امیرنژآد، ح.؛ رفیعی، ح. و اتقایی، م.، 1389. برآورد ارزش حفاظتی منابع طبیعی (مطالعه موردی: تالاب بین المللی میانکاله). مجله محیط شناسی. دوره 36، شماره 53، صفحات 89 تا 98.
2
حسنزاده، ر.، 1390. روش های تحقیق در علوم رفتاری (راهنمای علمی تحقیق). انتشارات ساوالان. چاپ سیزدهم. 317 صفحه.
3
ضیایی، ه.، 1388. راهنمای صحرایی پستانداران ایران. انتشارات کانون آشنایی با حیات وحش. چاپ سوم. 423 صفحه.
4
فتاحی، ا. و فتحزاده، ع.، 1390. ارزش گذاری حفاظتی حوزه های آبخیز با استفاده از روش ارزش گذاری مشروط (مطالعه موردی: تالاب گمیشان). مجله علوم و مهندسی آبخیزداری ایران. دوره 5، شماره 17، صفحات 47 تا 52.
5
فیض آبادی، ی. و هادیان، س.، 1394. تخمین ارزش پناهگاه حیات وحش دشت ناز ساری و عوامل مؤثر بر تمایل به پرداخت افراد برای حفاظت از منطقه. مجله علوم مرتع. دوره 5، شماره 4، صفحات 284 تا 293.
6
مرکز آمار ایران. 1395. آمار جمعیت کشور. رویت شده در خرداد 95.
7
مولایی، م. و کاووسی کلاشمی، م.، 1386. برآورد ارزش حفاظتی گل سوسن چلچراغ با استفاده از روش ارزش گذاری مشروط با انتخاب دوگانه یک بعدی. مجله اقتصاد و توسعه کشاورزی. دوره 25، شماره 3، صفحات 322 تا 329.
8
Bateman, I.J.; Langford, I.H.; Turner, R.K.; Willis, K.G. and Garrod, G.D., 1995. Elicitation and truncation effects in Contingent Valuation Studies. Ecological Economics. Vol. 12, No. 2, pp: 161-179.
9
Bishop, R.; Thomas, C.; Heberlein, A. and Mary, J.K., 1983. Contingent Valuation of Environmental Assets: Comparison with a simulated Market. Natural Resources Journal. Vol. 23, No. 3, pp: 619-633.
10
Bremner, A. and Park, K., 2007. Public attitudes to the management of invasive non-native species in Scotland. Biological conservation. Vol. 139, pp: 306-314.
11
Brouwer, R.; Beukering, P.V. and Sultanian, E., 2008. The impact of the bird flu on public willingness to pay for the protection of migratory birds. Ecological Economics. Vol. 64, pp: 575-585.
12
Brown, T.L. and Decker, D.J., 2005. Introduction to special issue on global community based wildlife management issues. Human Dimensions of Wildlife. Vol. 10, 81 p.
13
Cameron, T.A. and Quiggin, J., 1994. Estimation Using Contingent Valuation Data from a Dichotomous Choice with Follow-Up Questionnaire. Journal of Environmental Economics and Management. Vol. 27, pp: 218-234.
14
Caro, T.; Engilis, A.; Fitzherbert, J.E. and Gardner, T., 2004. Preliminary assessment of flagship species concept at a small scale. Animal Conservation. Vol. 7, pp: 63-70.
15
Chauhan, A. and Pirta, R.S., 2010. Public Opinion Regarding Human-Monkey Conflict in Shimla, Himachal Pradesh. Journal Human Ecology. Vol. 30, No. 2, pp: 105-109.
16
Clark, T.W. and Wallace, R.L., 2002. Understanding the human factor in endangered species recovery: an introduction to human social process. Endanger Species Update. Vol. 19, No. 4, pp: 87-94.
17
Ebua, V.B.; Agwafo, T.E. and Fonkwo, S.N., 2011. Attitudes and perceptions as threats to wildlife conservation in the Bakossi area, South West Cameroon. International Journal of Biodiversity and Conservation. Vol. 3, No. 12, pp: 631-636.
18
Fulton, D.C.; Manfredo, M.J. and Lipscomb, J., 1996. Wildlife value orientations: A conceptual and measurement approach. Human Dimensions of Wildlife. Vol. 1, pp: 24-47.
19
Giraud, K.; Turkin, B.; Loomis, J. and Cooper, J., 2002. Economic benefits of the protection program for the Steller sea lion. Marine Policy. Vol. 26, pp: 451-458.
20
Hanemann, W.M., 1984. Welfare evaluation in contingent evaluation experiments with discrete responses. American Journal of Agricultural Economics. Vol. 66, pp: 332-341.
21
Hanemann, W.M., 1994. Valuing the Environment through Contingent Valuation. Journal of Economic Perspectives, American Economic Association. Vol. 8, No. 4, pp: 19-43.
22
Heywood, V.H., 1995. Global biodiversity assessment. Cambridge: Cambridge University Press.
23
Hynes, S. and Hanley, N., 2009. The Crex crex lament: estimating landowners willingness to pay for corncrake conservation on Irish farmland.Biological Conservation. Vol. 142, pp: 180-188.
24
Israel, D. and Levinson, A., 2004. Willingness to pay for environmental quality: Testable Empirical Implication of the growth and Environmental Literature. Contributions to Economic Analysis and Policy. Vol. 3, pp: 1-29.
25
Jin, J.; Wang, Z. and Liu, X., 2008. Valuing black-faced spoonbill conservation in Macao: a policy and contingent valuation study.Ecological Economics. Vol. 68, pp: 328-335.
26
Kaczensky, P.; Blazic, M. and Gossowm, H., 2002. Public attitudes towards brown bears (Ursus arctos) in Slovenia. Biological Conservation. Vol. 118, pp: 661-674.
27
Katrina, B., 2000. People, parks, forests or fields: A realistic view of tropical forest conservation. Published by Elsevier Science Ltd Available online 24 July 2000.
28
Kellert, S.R., 1985. Social and perceptual factors in endangered species management. Journal Wildlife Management. Vol. 49, pp: 528-536.
29
Kideghesho, J.R.; Røskaft, E. and Kaltenborn, B.P., 2007. Factors influencing conservation attitudes of local people in Western Serengeti, Tanzania. Biodiversity and Conservation. Vol. 16, pp: 2213-2230.
30
Kotchen, M.J. And Reiling, S.D., 2000. Environmental attitudes, motivations, and contingent valuation of nonuse values: a case study involving endangered species.Ecological Economics. Vol. 32, pp: 93-107.
31
Lee, C., 1997. Valution of nature-based tourism resources using dichotomous choice contingent valuation method. Tourism Management. Vol. 18, No. 8, pp: 587-591.
32
Li, L.; Wang, J.; Shi, J.; Wang, Y.; Liu, W. and Xu, X., 2010. Factors influencing local people’s attitudes towards wild boar in Taohongling National Nature Reserve of Jiangxi Province, China. ProcediaEnvironmental Sciences. Vol. 2, pp: 1846-1856.
33
Loomis, J. and Larson, D.M., 1994. Total economic values of increasing Gray whale population: results from a contingent valuation survey of visitors and household. Marine Resource Economic. Vol. 9, pp: 275-286.
34
Loomis, J. and White, D., 1998. Economic benefits of rare and endangered species: summary and meta-analysis. Ecological Economic. Vol. 18, pp: 197-206.
35
Loomis, J. and Ekstrand, E., 1998.Alternative approaches for incorporating respondent uncertainty when estimating willingness to pay: the case of the Mexican spotted owl. Ecological Economics. Vol. 27, pp: 29-41.
36
Maddal, G.S., 1991. Introduction to Econometrics, 2nd Edition. New York: Macmillan.
37
Mitchell, R.C. And Carson, R.T., 1989. Using survey to value public goods. The contingent valuation method. Washington. Resources for the Future. 484 p.
38
Mmassy, E.C. and Roskaft, E., 2014. Factors affecting local ecological knowledge and perceived threat to the kori bustard (Ardeotis kori struthiunculus) in the Serengeti ecosystem. International Journal ofBiodiversity and Conservation. Vol. 6, No. 6, pp: 459-467.
39
Morzillo, A.T.; Mertig, A.G.; Hollister, J.W.; Garner, N. and Liu, J., 2010. Socioeconomic factors affecting local support for black bear recovery strategies. Environmental Management. Vol. 45, pp: 1299-1311.
40
Naughton-Treves, L. and Treves, A., 2005. Socio-ecological factors shaping local support for wildlife: Crop-raiding by elephants and other wildlife in Africa. In People and wildlife: Conflict or co-existence? Ed. R. Woodroffe, S. Thirgood, and A. Rabinowitz, pp: 252-277. New York: Cambridge University Press.
41
Ranjita, B. and Clem, T., 2004. The net benefit of saving the Asian elephant: a policy and contingent valuation study. Ecological Economics. Vol. 48, pp: 93-107.
42
Ranjita, B. and Clem, T., 2005. Effects of change in abundance of elephants on willingness to pay for their conservation. Journal of Environmental Management.Vol. 76, pp: 47-59.
43
Sawchuk, J.H.; Beaudreau, A.H.; Tonnes, D. and Fluharty, D., 2015. Using Stakeholder engagement to inform endangered species management and improve conservation. Marine Policy. Vol. 54, pp: 89-107.
44
Sitati, N.W.; Walpole, M.J.; Smith, R.J. and Leader Williams, N., 2003. Predicting spatial aspects of human elephant conflict. Journal of Applied Ecology. Vol. 40,pp: 667-677.
45
Sijtsma, M.T.J.; Vaske, J.J. and Jacobs, M.H., 2012. Acceptability of lethal control of wildlife that damage agriculture in the Netherlands. Society and Natural Resources. Vol. 25, No. 12, pp: 1308-1323.
46
Stankey, G.G. and Shindler, B., 2006. Formation of social acceptability judgments and their implications for management of rare and little-known species. Conservation Biology. Vol. 20, pp: 28-37.
47
Tsi, E.A.; Ajaga, N.; Wiegleb, G. And Muhlenberg, M.; 2008. The willingness to pay (WTP) for the conservation of wild animals: Case of the Derby Eland (Taurotragus derbianus gigas) and the African wild dog (Lycaon pictus) in North Cameroon. African Journal of Environmental Science and Technology. Vol. 2, No. 3, pp: 51-58.
48
Vaske, J.; Jacobs, M. And Sijtsma, M., 2011. Wildlife value orientations and demographics in The Netherlands. European Journal of Wildlife Research. Vol. 57, No. 6, pp:1179-1187.
49
Vincenot, C.E.; Collazo, A.M.; Wallmo, K. and Koyma, L., 2015. Public awareness and perceptual factors in the conservation of elusive species: The case of the endangered Ryukyu flying fox. Global ecology and Conservation. Vol. 3, pp 526-540.
50
Walpole, M.J. and Leader Williams, N., 2002. Tourism and flagship species in conservation. Biodiversity and Conservation. Vol. 11, pp: 543-547.
51
Wambuguh, O., 2008. Human-urban wildlife interface: Interactions around Tilden Regional Park, SanFrancisco bay area, California. Hum Dim Wildlife. Vol. 13, pp: 71-72.
52
Whitehead, J.C., 1993. Total economic values for coastal and marine wildlife: specification, validity and valuation issues. Marine Resource Economic. Vol. 8, pp: 119-132.
53
Wilson, C. and Tisdell, C., 2007.How knowledge affects payment to conserve an endangered bird. Contemp Econ Policy. Vol. 25, pp: 226-237.
54
Zander, K.K.; Anisworth, G.B.; Meyerhoff, J. and Garnett, S.T. 2014. Threatened bird valuation in Australia. Plos one. Vol. 9, No. 6, pp: 1-9.
55
ORIGINAL_ARTICLE
پایش تغییرات مولفه های فضایی-راهبردی زیستگاه ها براساس رهیافت اکولوژی سیمای سرزمین (مطالعه موردی: منطقه حفاظت شده لیسار)
طبق مدل لکه-کریدور-ماتریس، سیمای سرزمین دارای اجزای بی بدیلی می باشد که با حفظ آن ها پیوستگی و انسجام سیمای سرزمین علی رغم برخی تغییرات حفظ خواهد شد. براساس این مدل، لکه های زیستگاهی، ماتریس و نفوذپذیری آن برای برقراری ارتباط بین لکه ها، از اجزای استراتژیک زیستگاهی می باشند که اگر حفظ شوند، پایداری زمانی زیستگاه تامین خواهد شد. هدف از این تحقیق استفاده از رویکرد اکولوژی سیمای سرزمین در پایش تغییرات مولفه های فضایی-راهبردی مناطق حفاظت شده بوده وبدین منظور منطقه حفاظت شده لیسار و گونه مرال (Cervus elaphus maral) انتخاب شده است. در این تحقیق لایه تناسب زیستگاهی به عنوان شالوده تعریف لکه های زیستگاهی درنظر گرفته شد. هم چنین لایه مقاومت زیستگاهی زیربنای تحلیل وضعیت نفوذپذیری سیمای سرزمین و ترسیم شبکه ارتباط عملکردی بین لکه های زیستگاهی قرار گرفت. با ترکیب لایه های تناسب زیستگاهی، مقاومت زیستگاهی و ارتباط عملکردی، وضعیت عناصر استراتژیک سیمای سرزمین، یعنی لکه های زیستگاهی، نفوذپذیری ماتریس و ارتباط عملکردی و هم چنین پیامدهای مرتبط با تغییرات این عناصر، یعنی تباهی و ازهم گسیختگی زیستگاهی مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت. نتایج بیانگر آن هستند که کاهش 36 درصدی سطح تناسب زیستگاهی با امتیاز مساوی یا بالاتر از 50 و کاهش40-30درصدی نفوذپذیری سیمای سرزمین باعث کاهش محدوده زیستگاهی به میزان 35 درصد شده است. تحقیق حاضر ضمن تایید این موضوع که با سنجش مقاومت پوشش زمینی می توان پتانسیل نفوذپذیری سیمای سرزمین را کمی نمود، با ارایه شاخص مقایسه نفوذپذیری سیمای سرزمین، وضعیت نفوذپذیری سیمای سرزمین منطقه حفاظت شده لیسارو زیستگاه مرال را در مقاطع زمانی 2015-1990 مورد مقایسه قرار داده است.
http://www.aejournal.ir/article_66480_0a7be8f3814449c4bd563a7dc1f0c9fa.pdf
2018-03-21
35
40
سطح مقاومت
نفوذپذیری سیمای سرزمین
ارتباط عملکردی
گسیختگی زیستگاه
محمد
پناهنده
m1344_panahandeh@yahoo.com
1
پژوهشکده محیط زیست جهاد دانشگاهی
LEAD_AUTHOR
احمدرضا
یاوری
ayavari@ut.ac.ir
2
گروه برنامه ریزی و مدیریت محیط زیست، دانشکده محیط زیست، دانشگاه تهران
AUTHOR
اسماعیل
صالحی
tehranssaleh@ut.ac.ir
3
گروه برنامه ریزی و مدیریت محیط زیست، دانشکده محیط زیست، دانشگاه تهران
AUTHOR
بهرام
ملک محمدی
malekb@ut.ac.ir
4
گروه برنامه ریزی و مدیریت محیط زیست، دانشکده محیط زیست، دانشگاه تهران
AUTHOR
Auffret, A.G.; Plue, J. and Cousins, S.A.O., 2015. The spatial and temporal components of functional connectivity in fragmented landscapes. AMBIO. Vol. 44, pp: 41-59.
1
Forman, R.T.T., 1995. Some general principles of landscape and regional ecology. Landscape Ecology. Vol. 10, No. 3, pp: 133-142.
2
Ellis, E.C.; Klein Goldewijk, K.; Siebert, S.; Lightman, D. and Raman Ramankutty, N., 2010. Anthropogenic transformation of the biomes, 1700 to 2000. Global Ecology Biogeography. Vol. 44, pp: 589-606.
3
Fahrig, L., 2003. Effects of habitat fragmentation on biodiversity. Annual Review of Ecology, Evolution, and Systematics. Vol. 34, pp: 487-515.
4
Fischer, J. and Lindenmayer, D.B., 2007. Landscape modification and habitat fragmentation: a synthesis. Global Ecology Biogeography. Vol. 16, pp: 265-280.
5
Laurance, W.F. and Useche, D.C., 2009. Environmental synergisms and extinctions o f tropical species. Conservation Biology. Vol. 23, pp: 1427-1437.
6
Majka, D.; Jenness, J. and Beier, P., 2007. Corridor Designer: ArcGIS tools for designing andevaluating corridors. Available athttp://corridordesign.org
7
McAlpine C.A.; Seabrook L.M.; Morrison, T.H. and Rhodes, J.R., 2013. Strengthening Landscape Ecology’s Contribution to a Sustainable Environment. University of Queensland, Brisbane, QLD 4072, Australia.
8
Nachtergaele, F.; Biancalani, R. and Petri, M., 2011. Land degradation: SOLAW background thematic report 3. Rome: Food and Agriculture Organization of the United Nations. Vol. 2.
9
Pflu¨ger, F.J. and Balkenhol, N., 2014. A plea for simultaneously considering matrix quality and local environmental conditions when analyzing landscape impacts on effective dispersal. Molecular Ecology. Vol. 20, pp: 2146-2156.
10
Potts, S.G.; Biesmeijer, J.C. and Kremen, C., 2010. Global pollinator declines: Trends, impacts and drivers. Trends in Ecology and Evolution. Vol. 25, pp: 345-353.
11
Saura, S.; Estreguil, C.; Mouton, M. and Rodrigues Ereire, M., 2011. Network analysis to assess landscape connectivity trends: Application to European forests (1990–2000). Ecological indicator. Vol. 11, pp: 407-416.
12
Villard, M. and Metzger, J.P., 2014. Beyond the fragmentation debate: a to predict when habitat configuration really matters conceptual model. Applied Ecology. Vol. 51, pp: 309-318.
13
Wiens, J.A., 2012. Landscape ecology as a foundation for sustainable conservation. landscape ecology? Landscape Ecology. Vol. 24, pp: 1053-1065.
14
Wiens, J.A., 2012. Is landscape sustainability a useful concept in a changing world? Landscape Ecology. Vol. 28, pp: 1047-1052.
15
Wijkman, A. and Rockstrom, J., 2012. Bankrupting nature: denying our planetary boundaries London: Routledge.
16
Zeller, K.A.; McGarigal, K. and Whiteley, A.R., 2012. Estimating landscape resistance to movement: a review. Landscape Ecology. Vol. 27, pp: 777-797.
17
Zio´ łkowska, E.; Ostapowicz K.; Radeloff, V.C. and Kuemmerle, T., 2014. Effects of different matrix representations and connectivity measures on habitat network assessments. Landscape Ecology. Vol. 29, pp: 1551-1570.
18
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی سریع تهدیدهای تنوع زیستی در مجموعه حفاظتی جاجرود با استفاده از سامانه تصمیم گیری و GIS
امروزه تنوع زیستی در سرتاسر جهان، به ویژه درکشورهای درحال توسعه با تهدیدهای زیادی روبرو است. هدف اصلی این مطالعه، پهنه بندی وضعیت تهدید تنوع زیستی در قالب یک شبکه سلولی با یکی از روش های ارزیابی سریع است. برای ارزیابی سریع تهدیدهای تنوع زیستی در مجموعه حفاظتی جاجرود، ابتدا معیارها و زیرمعیارهای ارزیابی سریع تهدیدهای تنوع زیستی با مرور منابع مختلف شناسایی و سپس با استفاده از روش تاپسیس زیرمعیارهای با اهمیت تر انتخاب شدند. زیرمعیارهای انتخاب شده براساس شاخص های مربوطه کمی سازی و برای طبقه بندی وضعیت تهدید تنوع زیستی در منطقه مورد مطالعه استفاده شدند. در نهایت وضعیت تهدید تنوع زیستی در قالب یک شبکه سلولی در مجموعه حفاظت شده جاجرود در پنج طبقه بحرانی، تهدید زیاد یا درخطر، تهدید متوسط یا آسیب پذیر، تهدید کم و تهدید بسیارکم طبقه بندی شد.
http://www.aejournal.ir/article_66508_b746683f0c0b06e3ade1ad0325ee3995.pdf
2018-03-21
41
46
ارزیابی سریع
پهنه بندی
تکنیک تاپسیس
شاخص
شبکه سلولی
زهرا
باقری
zahrabagheri.d@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران
AUTHOR
شراره
پورابراهیم
sh_pourebrahim@ut.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران
LEAD_AUTHOR
محمد
کابلی
kaboli@ut.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران
AUTHOR
اصغرپور، م.ج.، 1383، تصمیم گیری های چندمعیاره، تهران، انتشارات دانشگاه تهران، 398صفحه.
1
سازمان حفاظت محیط زیست.1391.بازنگری و بروزرسانی مطالعات تفصیلی مجموعه جاجرود (حفاظت شده و پارک ملی). معاونت محیط طبیعی، دفتر زیستگاه ها و امور مناطق.جلد شانزدهم، کتاب طرح، 115صفحه.
2
Bagheri, Z.; Pourebrahim, Sh. and Kaboli, M., 2015. prioritizing biodiversity threats in Iran protected areas using TOPSIS method. J of Ecology and Environment. pp: 209-220.
3
Baral, H.; Keenan, R.J.; Sharma, S.K.; Stork, N.E. and Kasel,S.,2014.Spatial assessment and mapping of biodiversity and conservation priorities in a heavily modified and fragmented production landscape in north centeral Victoria, Australia, Ecological Indicators. Vol. 36, pp: 552-562.
4
Burgess, N.D.; Hales, J.D.; Riketts T.H. and Dinerstein, E., 2006. Factoring species, non species values and threats into biodiversity prioritization across the ecorgions of Africa and its islands. Biologi Conservation. Vol. 127, pp: 383-401.
5
Connelly, J.W.; Knick, S.T.; Schroeder, M.A. and Stiver, S.J., 2004. Conservation assessment of Greater Sage grouse and sage brush habitats. Chapter 7, pp: 276-400.
6
Ervin, J., 2003. Rapid Assessment of Protected Area Management Effectiveness in Four Countries. Bio Science. Vol. 53, pp: 833-841.
7
Gardner, T.A.; Barlow, J.; Sodhi, N.S. and Peres, C.A., 2010. Amulti regional assessment of tropical forest biodiversity in a human-modofied world, Biological Conservation. Vol. 143, pp: 2293-2300.
8
Ibisch, P.L.;Nowicki, C.; Gonzales, R.; Oberfrank, T.; Specht, C.; Araujo, N. and Minkowski, K., 1999. Identification of conservation priorities in the Bolivia Amazon Anew biological socioeconomic methodology using GIS, Deutscher Tropentage in Berlin.
9
Ibisch, P.L.; Nowicki, C.; Muller, R. and Araujo, N., 2002, Methods for the assessment of habitat and species conservation status in data poor countries-case study of Pleurothallidinae of the Andean rain forests of Bolivia. Congress of Conservation of Biodiveersity in The Andes and Amazon. pp: 255-246.
10
Rouget, M.; Richardson, D.M.; Cowling, R.M.; Lloyd, J.W. and Lombard, A.T., 2003. Cuttent patterns of habitat transformation and future threats to biodiversity in terrestrial ecosystems of the Cape Floristic Region, South Africa. Biological Conservation. Vol.112, pp: 63-65.
11
Rogres, H.M.; Glew, L.; Honzak, M. and Hudson, M.D.,2010, Prioritizing key biodiversity areas in Madagascar by including data on human pressure and ecosystem services. Journal of Landscape and Urbun planning. pp: 48-56.
12
Shi, H.; Singh, A.; Kant, S.; Zhu, Z. and Waller, A.E., 2005, Integrating Habitat Status, Human Population Pressure and Protection Status inti Biodiversity Conservation Priority Setting, Conservation Biology. pp: 1273-1285.
13
Thoisy, B.; Richard Hansen, C.; Goguillon, B.; Joubert, P.; Obstancias, J.; Winterton, P. and Brosse, S., 2010. Biodiversity Conservation. Vol. 19, pp: 1567-1589.
14
Thorn, J.; Nijman, V.; Smith, D. and Nekaris, K.A., 2009. Ecological niche modeling as a technique for assessing threats and setting conservation priorities for Asian slow Lorise (Primates: Nycticebus), Diversity and Distributions, Vol.15, pp: 289-298.
15
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی فلوسایتومتریک اسپرم گاو بعد از انجماد- یخ گشایی در رقیق کننده منی حاوی اتانول
هدف از انجام این مطالعه بررسی اثر افزودن اتانول به رقیق کننده بر کیفیت اسپرم گاو بعد از انجماد و یخ گشایی بوده است.در مجموع تعداد 24 انزال از چهار گاو نر (شش انزال از هر گاو طی سه هفته) جمع آوری شد. در هر تکرار، نمونه های منی با هم مخلوط و سپس به دو قسمت مساوی تقسیم شده و هریک با یکی از رقیق کننده های حاوی تیمارهای آزمایشی رقیق و منجمد شدند. تیمارهای مورد استفاده در این مطالعه شامل: 1) رقیق کننده فاقد اتانول به عنوان گروه شاهد (C) و 2) رقیق کننده حاوی 0/25 درصد اتانول (E) بود. پس از یخ گشایی نمونهها، فراسنجه های کیفی اسپرم شامل جنبایی، یکپارچگی و عملکرد غشای پلاسمایی، وضعیت زندهمانی و فعالیت میتوکندری مورد ارزیابی قرار گرفت. نتایج آزمایش حاضر نشان داد که اسپرم های گروه شاهد نسبت به اسپرم های گروه اتانول دارای جنبایی کل بالاتر (2/49±76/17 در مقابل 1/96±68/50) و میزان آپوپتوزیس کم تری (0/36±10/56 در مقابل 0/33±13/13) بودند (0/05>p). هم چنین، در سایر فراسنجه های کیفی اسپرم شامل یکپارچگی و عملکرد غشای پلاسمایی اسپرم و فعالیت میتوکندری، تفاوتی بین دو گروه شاهد و اتانول مشاهده نشد (0/05>p). نتایج این مطالعه نشان می دهد که اتانول می تواند اثر منفی بر فراسنجه های اسپرم گاو بعد از انجماد و یخ گشایی بگذارد.
http://www.aejournal.ir/article_66533_0286896b2b97573328f57e015efee2ac.pdf
2018-03-21
47
52
آپوپتوزیس
جنبایی
کیفیت منی
میتوکندری
سید محمد هادی
حسینی
hosseinsharideh@ut.ac.ir
1
گروه علوم دامی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
مهدی
ژندی
mzhandi@ut.ac.ir
2
گروه علوم دامی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
احمد
زارع شحنه
azareh@ut.ac.ir
3
گروه علوم دامی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
محسن
شرفی
sharafi2000@gmail.com
4
گروه علوم طیور، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تربیت مدرس، تهران، ایران گروه جنین شناسی، مرکز تحقیقات زیست پزشکی تولید مثل، پژوهشگاه رویان، تهران، ایران
AUTHOR
مجتبی
امام وردی
emamverdi@ut.ac.ir
5
گروه علوم دامی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
مهدی
خدایی
mmotlagh2002@gmail.com
6
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه اراک، اراک، ایران
AUTHOR
انصاری، م.؛ و توحیدی، آ. و مرادی شهربابک، م.، 1389. اثرات مخرب اتانول بر ویژگیهای حیاتی سلول اسپرم در بز. مجله دامپزشکی و آزمایشگاه. دوره 2، شماره 2، صفحات 151 تا 156.
1
Aitken, R.J.; Buckingham, D. and Harkiss, D., 1993. Use of a xanthine oxidase free radical generating system to investigate the cytotoxic effects of reactive oxygen species on human spermatozoa. J. Reprod. Fertil. Vol. 97, pp: 441-450.
2
Anderson, S.; Harkness, W.; Akin, Y.; Kaproth, M. and Killian, G., 1994. Categorical Data Analysis of the Effect on Bull Fertility, of Butylated Hydroxytoluene Addition to Semen, Extenders Prior to Freezing. J Dairy Sci. Vol. 77, No. 8, pp: 2302-2307.
3
Aumuller, G. and Seitz, J., 1990. Protein secretion and secretory processes in male accessory sex glands. Int Rev Cytol. Vol. 121, pp: 127-231.
4
Aurich, J.E.; Schonherr, U.; Hoppe, H. and Aurich, C., 1997. Effects of antioxidants on motility and membrane integrity of chilled-stored stallion semen. Theriogenology. Vol. 48, pp: 185-192.
5
Bailey, J.L.; Blodeau, J. and Cormier, N., 2000. Semen cryopreservation in domestic animals: A damaging and capacitating phenomenon minireview. J. Androl. Vol. 21, pp: 1-7.
6
Ballester, J.; Johannisson, A.; Saravia, F.; Haard, M.; Gustafsson, H.; Bajramovic, D. and Rodriguez Martinez, H., 2007. Post-thaw viability of bull AI-doses with low-sperm numbers. Theriogenology. Vol. 68, No. 6, pp: 934-943.
7
Baumber, J.; Ball, B.A.; Gravance, C.G.; Medina, V. and Davies Mora, M.C.G., 2000. The effect of reactive oxygen species on equine sperm motility, viability, acrosomal integrity, mitochondrial membrane potential, and membrane lipid peroxidation. J Androl. Vol. 21, No. 6, pp: 895-902.
8
Bilodeau, J.F.; Blanchette, S.; Gagnon, C. and Sirard, M.A., 2001. Thiols prevent H 2 O 2-mediated loss of sperm motility in cryopreserved bull semen. Theriogenology. Vol. 56, No. 2, pp: 275-286.
9
Blom, E., 1950. A one-minute live-dead sperm stain by means of eosin-nigrosin. Fertil Steril. Vol. 1, pp: 176-177.
10
Circu, M.L. and Aw, T.Y., 2010. Reactive oxygen species, cellular redox systems, and apoptosis. Free Radic Biol Med. Vol. 48, No. 6, pp: 749-762.
11
Chen, Y.; Foote, R.H. and Brockett, C.C., 1993. Effect of sucrose, trehalose, hypotaurine, taurine, and blood serum on survival of frozen bull sperm. Cryobiology. Vol. 30, No. 4, pp: 423-431.
12
Dodaran, H.V.; Zhandi, M.; Sharafi, M.; Nejati Amiri, E.; Nejati Javaremi, A.; Mohammadi Sangcheshmeh, A.; Shehab El, M.A.M.M. and Shakeri, M., 2015. Effect of ethanol induced mild stress on post-thawed bull sperm quality. Cryobiology. Vol. 71, No. 1, pp: 12-17.
13
Donnelly, G.P.; McClure, N.; Kennedy, M.S. and Lewis, S.E.M., 1999. Direct effect of alcohol on the motility and morphology of human spermatozoa. Andrologia. Vol. 31, No. 1, pp: 43-47.
14
Foote, R.H.; Chen, Y.; Brockett, C.C. and Kaproth, M.T., 1993. Fertility of bull spermatozoa frozen in whole milk extender with trehalose, taurine, or blood serum. J Dairy Sci. Vol. 76, No. 7, pp: 1908-1913.
15
Gholami, H.; Chamani, M.; Towhidi, A. and Fazeli, M.H.M. 2010. Effect of feeding a docosahexaenoic acid enriched nutriceutical on the quality of fresh and frozen thawed semen in Holstein bulls. Theriogenology. Vol. 74, No. 9, pp: 1548-1558.
16
Gunasena, K.T. and Critser, J.K., 1997. Utility of viable tissues ex vivo. Reprod. Tissue Bank. Sci. Princ. Acad. Press, USA. pp: 1-21.
17
Kayani, M.A. and Parry, J.M., 2010. The in vitro genotoxicity of ethanol and acetaldehyde. Toxicity in vitro. Vol. 24, pp: 56-60.
18
Kotch, L.E.; Chen, S. and Sulik, K.K., 1995. Ethanol induced teratogenesis: Free radical damage as a possible mechanism. Teratology. Vol. 52, No. 3, pp: 128-136.
19
La Vignera, S.; Condorelli, R.A.; Balercia, G.; Vicari, E. and Calogero, A.E., 2013. Does alcohol have any effect on male reproductive function? A review of literature. Asian journal of andrology. Vol. 15, No. 2, pp: 221.
20
Malo, C.; Gil, L.; Gonzalez, N.; Martínez, F.; Cano, R.; De Blas, I. and Espinosa, E., 2010. Anti oxidant supplementation improves boar sperm characteristics and fertility after cryopreservation: comparison between cysteine and rosemary (Rosmarinus officinalis). Cryobiology. Vol. 61, No. 1, pp: 142-147.
21
Mammoto, A.; Masumoto, N.; Tahara, M.; Ikebuchi, Y.; Ohmichi, M.; Tasaka, K. and Miyake, A., 1996. Reactive oxygen species block sperm-egg fusion via oxidation of sperm sulfhydryl proteins in mice. Biol Reprod. Vol. 55, No. 5, pp: 1063-1068.
22
Medeiros, C.M.O.; Forell, F.; Oliveira, A.T.D. and Rodrigues, J.L., 2002. Current status of sperm cryopreservation: why isn’t it better? Theriogenology. Vol. 57, pp: 327-344.
23
Najafi, A.; Zhandi, M.; Towhidi, A.; Sharafi, M.; Sharif, A.A.; Khodaei Motlagh, M. and Martinez Pastor, F., 2013. Trehalose and glycerol have a dose-dependent synergistic effect on the post-thawing quality of ram semen cryopreserved in a soybean lecithin-based extender. Cryobiology. Vol. 66, No. 3, pp: 275-282.
24
Navarra, M.; Romano, C.; Lorenzon, T.; Rotiroti, D. and Di Renzo, G., 2001. Ethanol exposure inhibits the cytotoxic effect induced by gp120 in CHP100 human neuroblastoma cells. Journal of Neuroscience Research. Vol. 65, pp: 354-361.
25
Olson, S.E. and Seidel, G.E., 2000. Culture of in vitro produced bovine embryos with vitamin E improves development in vitro and after transfer to recipients. Biol Reprod. Vol. 62, No. 2, pp: 248-252.
26
Rahimipour, M.; Talebi, A.R.; Anvari, M.; Sarcheshmeh, A.A. and Omidi, M., 2013. Effects of different doses of ethanol on sperm parameters, chromatin structure and apoptosis in adult mice. European Journal of Obstetrics & Gynecology and Reproductive Biology. Vol. 170, No. 2, pp: 423-428.
27
Revell, S.G. and Mrode, R.A., 1994. An osmotic resistance test for bovine semen. Anim Reprod Sci. Vol. 36, N0. 1, pp: 77-86.
28
Safa, S.; Moghaddam, G.; Jozani, R.J.; Kia, H.D. and Janmohammadi, H., 2016. Effect of vitamin E and selenium nanoparticles on post-thaw variables and oxidative status of rooster semen. Anim Reprod Sci. Vol. 174, pp: 100-106.
29
Sarıozkan, S.; Bucak, M.N.; Tuncer, P.B.; Ulutas, P.A. and Bilgen. A., 2009. The influence of cysteine and taurine on microscopic–oxidative stress parameters and fertilizing ability of bull semen following cryopreservation. Cryobiology. Vol. 58, No. 2, pp: 134-138.
30
Sharafi, M.; Zhandi, M. and Sharif, A.A., 2014. Supplementation of soybean lecithin based semen extender by antioxidants: complementary flowcytometric study on post-thawed ram spermatozoa. Cell Tissue Bank. Vol. 16, No. 2, pp: 261-269.
31
Uysal, O.; Bucak, M.N.; Yavas, I. and Varisli, O., 2007. Effect of various antioxidants on the quality of frozen-thawed bull semen. J Anim Vet Adv. Vol. 6, No. 2, pp: 1362-1366.
32
Vishwanath, R. and Shannon, P., 2000. Storage of bovine semen in liquid and frozen state. Anim. Reprod. Sci. Vol. 62, pp: 23-53.
33
Watson, P.F., 1995. Recent developments and concepts in the cryopreservation of spermatozoa and the assessment of their post-thawing function. Reprod. Fertil. Dev. Vol. 7, pp: 871-891.
34
Yan, D.; Dong, J.; Sulik, K.K. and Chen, S., 2010. Induction of the Nrf2 driven antioxidant response by tert butylhydroquinone prevents ethanol-induced apoptosis in cranial neural crest cells. Biochem Pharmacol. Vol. 80, No. 1, pp: 144-149.
35
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر پودرآویشن بر فراسنجه های ایمنی در بره های نر نژاد فراهانی
به منظور بررسی تأثیر آویشن بر فراسنجه های ایمنی در بره های نر نژاد فراهانی از 20 رأس بره نر به صورت چهار تیمار پنج رأسی، در دو سن مختلف 5/5 ماهه و یک ساله استفاده شد. پژوهش حاضر در قالب طرح کاملاً تصادفی با آرایش فاکتوریل 2×2 به مدت 70 روز در ایستگاه تحقیقاتی گروه علوم دامی دانشگاه اراک انجام شد. تیمارهای آزمایشی عبارت بودند از: 1- جیره بره های 5/5 ماهه فاقد پودر آویشن، 2- جیره دارای 20 گرم پودر آویشن جهت تغذیه بره های 5/5 ماهه، 3- جیره بره های یک ساله فاقد پودر آویشن، 4- جیره دارای 20 گرم پودر آویشن جهت تغذیه بره های یک ساله. نتایج نشان داد که استفاده از گیاه داروئی آویشن تأثیر معنی داری بر فراسنجه های هماتولوژی و غلظت ایمنوگلوبولین ها (IgA، IgE و IgM) بره های نر نژاد فراهانی نداشت (0/05<P). نتیجه این تحقیق نشان داد که استفاده از پودر آویشن بر فراسنجه های خونی اثری نداشت.
http://www.aejournal.ir/article_66536_4f85aef646adece692cb2073c78a9f09.pdf
2018-03-21
53
58
آویشن
فراسنجه های ایمنی
گوسفند فراهانی
زهرا
مرادپور
zmoradpoor489@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه اراک
AUTHOR
مهدی
خدایی مطلق
mmotlagh2002@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه اراک
LEAD_AUTHOR
مهدی
کاظمی بنچناری
mmotlagh2002@hotmail.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه اراک
AUTHOR
امیرحسین
خلت آبادی فراهانی
a-farahani@araku.ac.ir
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه اراک
AUTHOR
Ajayi, O.B. and Odutuga, A., 2004. Effect of low-zinc status and essential fatty acid deficiency of activities of aspartate amino transferase and alanin amino tranferazse in liver and serum of albino rats. Journal Nahrung. Vol. 48, No. 2, pp: 88-90.
1
Ajibade T.O.; Olayemi F.O. and Arowolo R.O.A., 2012. The haematological and biochemical effects of methanol extract of the seeds of Moringa oleifera in rats. JournalMedicine Plants Research. Vol. 6, No. 4, pp: 615-621.
2
Al-Kassie, G.A.M., 2009. Influence of two plant extracts derived from thyme and cinnamon on broiler performance. Journal Pakistan Veterinary. Vol. 29, No. 4, pp: 169-173.
3
Ather, M.A.M., 2000. Polyherbal additive proves effective against vertical transmission of IBD. World Poultry Science. Journal Elsevier. Vol. 16, pp: 50-52.
4
Awaad, M.H.H.; Sahar, A.; Zouelfakar, S.; Elshazly, O.A.; Afify, M.A. and Shaheed, I.B., 2000b. Immuno modulatory properties of inactivated Propiobacterium granulosum (IM-104). 1: In non-immunosuppressed chickens. Egyptian Journal Veterinary Medicine Associated. Vol. 60, pp: 137-148.
5
Billiard, M.; Blood, D.C. and Radostits, O.M., 1989. Veterinary medicine. 7th ed. London: Baillier and Tindal. pp: 228-298.
6
Chehreie, A.; Noubakht, A. and Shahir, M.H., 2011. Effects of herbal supplement Byvhrbal (contains essential oils of thyme and garlic) on performance, egg quality, blood biochemical and immunity parameters of laying hens. Journal of Research and Construction. Ministry of Agriculture. Vol. 90, pp: 58-65.
7
Chen, X.; Wu, Z. and Yin, J., 2003. Effects of four species of herbs on immune function of Carassius auratus gibelio. Journal of Fishery Sciences of China. Vol. 10, pp: 36-40.
8
El-Ghousein, S.S. and Al-Beitawi, N.A., 2009. The Effect of Feeding of Crushed Thyme (Thymus Valgaris L) on Growth, Blood Constituents, Gastrointestinal Tract and Carcass Characteristics of Broiler Chickens. Journal of Poultry Science. Vol. 46, pp: 100-104.
9
Garcia, V.P.; Catala-Gregori, F.; Hernandez, M.; Megras, D. and Madrid, J., 2006. Effect of formic acid and plant extracts on growth, nutrient digestibility, intestine mucosa morphology, and meat yield of broilers. Journal of Applied Poultry Research. Vol. 16, pp: 555-562.
10
Ghasemi, R.; Zarei, M. and Torki, M., 2010. Adding medicinal herbs including garlic (Allium sativum) and thyme (Thymus vulgaris) to diet of hens and evaluating productive performance and egg quality characteristics. Animal Veterinary Science. Vol. 5, No. 2, pp: 151-154.
11
Greathead, H., 2003. Plants and plant extracts for improving animal productivity. proecedur. Nutr. Soc. Vol. 62, pp: 279-290.
12
Grossi, A. and Lacetera, N., 2004. Administration of Thuya occidentalis in homeopathic dilution in goats vaccinated against bluetongue virus: a preliminary study. Journal of Animal and Feed Sciences. Vol. 13, pp: 593-596.
13
Hernandez, F.; Madrid, J.; Garcia, V.; Orengo, J. and Megias, M.D., 2004. Influence of two plant extracts on broiler performance digestibilities and digestive organ size. Journal of Poultry Science. Vol. 83, pp: 169-174.
14
Jatav, V.S.; Singh, S.K. and Sharma, A.K., 2011. A Recent Phamacological trends of Glycryrrhiza glabra. International Journal of Phamaceutical frontier research. Vol. 1, No. 1, pp: 170-185.
15
Jugl-Chizzola, M.; Ungerhofer, E.; Gabler, C.; Hagmuller, W.; Chizzola, R.; Zitterl-Eglseer, K. and Franz, C., 2006. Testing of the palatability of Thymus vulgaris L. and Origanum vulgare L. as flavouring feed additive for weaner pigs on the basis of a choice experiment. Berliner und Münchener tierärztliche Wochenschrift. Vol. 119, pp: 238-243.
16
Langhout, P., 2000. New additives for broiler chickens. World Poultry Science. Journal Elsevier. Vol. 16, pp: 22-27.
17
McGavin, M.D.; William, W.C. and James, F., 2000. Zachary. Special veterinary pathology. first indian ed. delhi: published by s.k jain for cbs publishers and distrusters. pp: 229-268.
18
Mirzaei, F.P.; Dang, A.K. and Sehgal, J.P., 2011. Efficacy of polyherbal feed additives on nutrient digestibility, milk yield and composition of lactating crossbred goats. Indian Journal of Animal Sciences. Vol. 81, No. 8, pp: 886-890.
19
özer, H.; Sökme, M.; Güllüce, M.; Adigüzel, A.; Sahin, F.; Sökmen, A.; Kilic, H. and Baris, O., 2007. Chemical composition and antimicrobial and antioxidant activities of the essential oil and methanol extract of Hippomarathum microcarpum (Bieb.) from Turkey. Journal Agricultural and Food Chemistry. Vol. 55, pp: 937-942.
20
Rivera, E. and Hu, S., 2003. Ginseng and aluminium hydroxide act synergistically as vaccine adjuvants. Vaccine. Vol. 21, pp: 1149-1157.
21
Salamat, A., 2014. The effect Ziziphora tenuior of ration dry matter digestibility, microbial population in the rumen and blood parameters Dalaq sheep. Thesis MSC. Gorgan University of Agricultural Science and Natural Resources. (In Persian).
22
Savoini, G. and Bontempo, V., 2002. Alternative antimicrobials in the nutrition of postweaning piglets. Veterinary Record. Vol. 151, No. 19, pp: 577-580.
23
Seyedpiran, C.A.; Noubakht, A. and Khodaie, S., 2011. The effects of probiotics, organic acid and mixed herbs on performance, egg quality and blood biochemical and immunity parameters of laying hens. Journal of Veterinary, Islamic Azad University of Tabriz. Vol. 17, pp: 1111-1122.
24
Schranner, I.; Wurdinger, M.; Klumpp, N.; Lösch, U. and Okpanyi, S.N., 1989. Beeinflussung der aviären humoralen immunreaktionen durch infuex und Echinacea angustifolia extract. Journal of Veterinary. Vol. 36, pp: 353-364.
25
Steiner, T., 2006. Managing gut health. Natural Growth Promoters as a Key to Animal Performance. Nottingham University Press. 98 p.
26
Tollba, A.A.H.; Shabaan, S.A.M. and Abdel-Mageed, M.A.A., 2010. Effect of using aromatic herbal extract and blended with organic acids on productive and physiological performance of poultry. 2- The growth during cold winter stress. Egyptian Poultry Science. Vol. 30, No. 1, pp: 229-248.
27
Tucker, L., 2002. Botanical broilers: Plant extracts to maintain poultry performance. Feed international. Vol. 23, pp: 26-29.
28
Vakili, A.R.; Khorrami, B.; DaneshMesgaran, M. and Parand, E., 2013. The effects of thyme and cinnamon essential oils on performance, rumen fermentation and blood metabolites in holstein calves consuming high concentrate diet. Asian Australas Journal of Animal Science. Vol. 26, No. 7, pp: 935-944.
29
Wei, A. and Shibamoto, T., 2007. Antioxidant activities and volatile constituents of various essential oils. Journal of Agricultural Food Chemistry. Vol. 55, pp: 1737-1742.
30
Zi, X.; Mukhtar, H. and Agarwa, R., 1997. Novel cancer chemopreventive effects of a flavonoid antioxidant silymarin. Biochemical and Biophysical Research Communications. Vol. 239, pp: 334-339.
31
ORIGINAL_ARTICLE
اثر عصاره هیدروالکلی گیاه افسنطین (Artemisia absinthium) بر بافت رحم، لوله های رحمی و میزان هورمون های محور هیپوفیز گناد در موش آزمایشگاهی نژاد NMRI
افسنطین به عنوان یک داروی قاعده آور و موثر در سقط جنین در طب سنتی اشاره شده است. لذا در مطالعه حاضر، اثر عصاره هیدروالکلی افسنطین بر بافت رحم، لولههای رحمی و میزان هورمونهای محور هیپوفیز-گناد در موش ماده نژاد NMRI مورد بررسی قرار گرفت. در این مطالعه تجربی، تزریق عصاره هیدروالکلی گل و ساقه گیاه افسنطین به مدت 30 روز به صورت درون صفاقی بر روی 50 سر موش ماده نژاد NMRI با دوزهای 50، 100 و150 میلیگرم بر کیلوگرم انجام گرفت. گروه کنترل بدون تزریق بود و گروه شاهد فقط آب مقطر دریافت کرد. سپس حیوانات تشریح و نمونه خون از قلب گرفته شد. سطوح هورمونهای FSH،LH، استروژن و پروژسترون سرم اندازهگیری و مقاطع بافتی از رحم و لولههای رحمی تهیه شد. کاهش معنیداری در وزن بدن همه گروههای تجربی در مقایسه با گروه کنترل و شاهد مشاهده شد (0/05>p). ضخامت لایههای (پریمتر، میومتر، آندومتر) بافت رحم و تعداد غدد رحمی کاهش قابل توجهی (0/05>p) در گروههای تجربی دریافت کننده عصاره با دوز تزریقی 100، 150 میلیگرم بر کیلوگرم در مقایسه با گروه کنترل و شاهد نشان داد. تغییر معنیداری در سطوح هورمونهای استروژن و پروژسترون در گروههای تجربی در مقایسه با گروههای کنترل و شاهد مشاهده نشد. میزان هورمونهای FSH و LH در گروههای تجربی دریافت کننده عصاره با دوزهای 100، 150 میلیگرم بر کیلوگرم کاهش معنیداری (0/05>p) نسبت به گروه های کنترل و شاهد نشان داد. عصاره هیدروالکلی افسنطین در دوزهای بالا اثرات تخریبی بر بافت رحم دارد که احتمالاً به دلیل وجود ترکیبات آلفا و بتا توجون، آلکالوئید و ساپونین، در این گیاه است.
http://www.aejournal.ir/article_63775_503f328a760185609afc311c5d10f1f5.pdf
2018-03-21
59
66
افسنطین
رحم
اویداکت
محور هیپوفیز-گناد
موش
شکوه
چگینی
shokouhchegini@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی ، واحد تهران مرکزی، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران، صندوق پستی: 768-13185
AUTHOR
مینا
رمضانی
mina.ramezani@gmail.com
2
گروه زیست شناسی ، واحد تهران مرکزی، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران، صندوق پستی: 768-13185
LEAD_AUTHOR
سولماز
شهلا
sz_shahla@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی ، واحد تهران مرکزی، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران، صندوق پستی: 768-13185
AUTHOR
چگینی، ش.، 1395. اثر عصاره هیدروالکلی گیاه افسنطین بر هورمون های جنسی و دستگاه تولیدمثلی موش ماده نژاد NMRI، پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده علوم پایه. دانشگاه آزاد تهران مرکز. صفحات 91 تا 101.
1
رجحان، م.، 1384. بافت شناسی پزشکی. انتشارات چهر. تهران. چاپ سیزدهم. صفحات 451 تا 470.
2
زرگری، ع.، 1372. گیاهان دارویی. جلد سوم. انتشارات دانشگاه تهران. چاپ پنجم. صفحات 80 تا 88.
3
گندمی نصرآبادی، ح.؛ عباس زاده، س.؛ طیارهشتجین، ن. و یمرلی، آ.، 1391. مطالعه ترکیب شیمیایی اسانس گیاه افسنطین (Artemisia absinthium ) و اثر مهاری اسانس و عصاره های آبی، الکلی آن بر برخی باکتری های بیماری زای غذایی. فصلنامه گیاهان دارویی. دوره 2، شماره 42، صفحات 121 تا 127.
4
Adlercreutz, H.; Bannwart, C.; Wahala, K.; Makela, T.; Brunow, G. and Hase, T., 1993. Inhibition of human aromatase by mammalian lignans and isoflavonoid phytoestrogens. The Journal of Steroid Biochemistry and Molecular Biology. Vol. 44, No. 2, pp: 147-153.
5
Ajah, P.O. and Eteng, M.U., 2010. Phytochemical screening and histopathological effects of single acute dose administration of Artemisia annua,L. on testes and ovaries of Wistar rats. African Journal of Biochemistry Research. Vol. 4, No. 7, pp: 179-185.
6
Ajulo, M.; Olugbenga, A.E. and Musa, A.H., 2012. Toxicologycal activity of crude Saponin extract of Ficus platyphylla. Asian Jornal Pharmaceutical and Clinical Research.Vol. 5, No. 1, pp: 30-33.
7
Amat, N.; Upur, H. and Blazekovic, B., 2010. In vivo hepatoprotective activity of the aqueous extract of Artemisia absinthium L. against chemically and immunologically induced liver injuries in mice. Journal of Ethopharmacol. Vol. 131, No. 2, pp:478-484.
8
Asuquo, O.R.; Oko, O.O.; Brownson, E.S.; Umoetuk, G.B. and Utin, I.S., 2013. Effects of ethanolic leaf extract of Spondias mombin on the pituitarygonadal axis of female Wistar rats. Asian Pacific Journal of Reproduction. Vol. 2, No. 3, pp: 169-173.
9
Baghban, T.S.; Nematy, M.; Mazidi, M.; Kamgar, M.; Soukhtanloo, M. and Hosseini, M., 2015. The effect of hydro-alcoholic extract of Artemisia absinthium on appetite in male rats. Avicenna Journal of Phytomedicine. Vol. 5, No. 2, pp: 78-83.
10
Bauer, J.; Stoffel, W.B.; Flugel, D.; Kluge, M. and Elger, C.E., 2000. The impact of epilepsy surgery on sex hormones and the menstrual cycle in female patients. Seizure. Vol.9, No. 6, pp: 389-393.
11
Danilets, M.G.; Belskii, I.u.P.; Gurev, A.M.; Belousov, M.V.; Belskaia, N.V. and Trofimova, E.S., 2010. Effect of plant polysaccharides on TH1-dependent immune response: screening investigation. Eksp Klin Farmakol Journal articles. Vol. 73, No. 6, pp: 19-22.
12
Fatma, Z.; Dashlouti, M.; Bakr, S.; Amoudi, N.S. and Sayed Ahmad, M., 2013. Effect of Some vegetable seeds and herbs on hyperglycemic rats.Journal of American Science. Vol. 9, No. 8, pp: 36-45.
13
Ghaedi, M. and Johari, H., 2014. Effect of Artemisia absinthium hydroalchoholic extract on hypophyseal-gonadal axis and changes of testicular tissue in mature male rats. Journal of Jahrom University of Medical Sciences. Vol. 11, pp: 34.
14
Izharul, H.; kamal, D. and Chishti, M.A., 2012. Concept of contraception inunani medicin: a view, International Reserch Journal of Pharmacy. Vol. 3, No. 1, pp: 93-95.
15
Krebs, S.; Omer, T.N. and Omer, B., 2010. Wormwood (Artemisia absinthium) suppresses tumour necrosis factor alpha and accelerates healing in patients with Crohn's disease, A controlled clinical trial. Phytomedicine. Vol. 17, No. 5, pp: 305-309.
16
Kumar Ashok, P. and Upadhyaya, k., 2013. Preliminary Phytochemical Screening and Physico Chemical Parameters of Artemisia absinthium and Artemisia annua. Journal of Pharmacognosy. Vol. 1, No. 6, pp: 229-235.
17
Mannan, A.; Syed, T. N.; Yameen, M.A.; Ullah, N. and Ismail, T., 2012. Effect of growth regulators on in vitro germination of Artemisia absinthium. Scientific research and essays. Vol. 7, No. 14, pp: xxx-xxx.
18
Noori, S. and Al Waili, D., 1986. Treatment of diabetes mellitus by Artemisia herba-alba extract: preliminary study. Clinical and Experimental Pharmacology and Physiology. Vol. 13, No. 7, pp:569-573.
19
Patocka, J. and Plucar, B., 2003. Pharmacology and toxicology of absinth. Journal of Applied Biomedicine. Vol. 1, No. 4, pp:199- 205.
20
Rice, K.C. and Wilson, R.S., 1976. Isothujone, a small nonnitrogenous molecule withantinociceptive activity in mice. Journal of Medicinal Chemistry. Vol. 19, No. 8, pp: 1054-1057.
21
Sammartino, A.; Dicarlo, C. and Bifulico, G., 2003. Effects of genistein on the endometrium: ultrasonographic evaluation. Journal of Clinical Toxicology. Vol. 17, No. 1, pp: 45-49.
22
Shahnazi, M.; Azadmehr, A.; Hajiaghaee, R.; Mosalla, S. and Latifi, R., 2015. Effects of Artemisia AbsinthiumL. Extract on the Maturation and Function of Dendritic Cells, Jundishapur Jundishapur Journal of Natural Pharmaceutical Products. Vol. 10, No. 2, e20163.
23
Shaoquan, J.; Gawain, M.; Willis, G.; Steven, G. and Michael, E., 1999.Soybean Isoflavones, Genistein and Genistin, Inhibit Rat Myoblast Proliferation, Fusion and Myotube Protein Synthesis. The American Society for Nutritional Sciences. Vol. 129, No. 3, pp: 1291-1297.
24
Shirazi, M.H., 2003 Studying anti-bacterial effects of 10 plants' extracts on Helicobacter pilori and comparing it with selective efficient antibiotics. Iran's Herbs Quarterly. Vol. 5, pp: 51-59.
25
Uchendu, C.N. and Isek, T., 2008. Antifertility activity of aqueous ethanolic leaf extract of Spondias mombin (Anacardiaceae) in rats. African Health Sciences. Vol. 8, No.3, pp: 163-167.
26
Yakubu, M.T. and Musa, I.F., 2012. Effects of post-coital Administration of Alkaloids from Senna alata (Linn. Roxb) Leaves on some Fetal and Maternal Outcomes of Pregnant Rats. Journal of Reproductive Infertility. Vol. 13, No. 4, pp: 211-217.
27
ORIGINAL_ARTICLE
مدل سازی مناطق لانه گزینی کبوتر جنگلی (Columba palumbus) در منطقه حفاظت شده باغ شادی یزد، با استفاده از رگرسیون منطقی دو تایی
در این مطالعه خصوصیات نواحی لانه گذاری کبوتر جنگلی (Columba palambus) در منطقه حفاظت شده باغ شادی خاتم مورد بررسی قرار گرفت. تعداد 20 آشیانه گونه در فصل بهار، سال 1393 از طریق استقرار 10 ترانسکت تصادفی در محدوده مورد مطالعه شناسایی شد. تعداد 20 نقطه کنترل هم در فاصله 500 متری از هر آشیانه در جهات مختلف به دست آمد. متغیرهای زیستگاهی نظیر سطح تاج پوشش، ارتفاع گونههای گیاهی، فاصله آشیانه تا نزدیک ترین منبع آب و جاده در نقاط حضور اندازه گیری و با نقاط کنترل مقایسه گردید. نتایج آزمون t مستقل در مقایسه میانگین متغیرها بین مناطق حضور و عدم حضور نشان داد کبوتر جنگلی درختان بنه (Pistacia atlantica)با سطح تاج پوشش، ارتفاع بیش تر و دور از جاده را جهت لانه گزینی ترجیح می دهد. در اکثر موارد لانههای دارکوب سوری نیزدر کنار لانه کبوتر جنگلی (C. palambus) بروی یک پایه درختی دیده میشد که نشانی از عدم رقابت تغذیهای بین این دو گونه است.آزمون لجستیک رگرسیون نشان داد که سطح تاج پوشش درختان بنه (P. atlantica) متغیر مهمی در انتخاب نقاط لانه گذاری برای این گونه است(0/002=p و 0/54=2 r ) حفاظت از جامعه کلیماکس درخت زار، نقش مهمی را در بقای این گونه در منطقه خواهد داشت (0/05>p).
http://www.aejournal.ir/article_66570_cf5969ec4bc491b15cb223738c3affe4.pdf
2018-03-21
67
72
انتخاب زیستگاه
کبوتر جنگلی
متغیرهای زیستگاهی
منطقه حفاظت شده باغ شادی
شیرین
آقا نجفی
shirinaghanajafi@gmail.com
1
گروه محیط زیست، واحد میبد، دانشگاه آزاد اسلامی میبد، ایران
LEAD_AUTHOR
رامین
بخشی پور
2
گروه محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
اداره کل حفاظت محیط زیست یزد، 1388. طرح جامع مطالعاتی منطقه حفاظت شده باغ شادی خاتم. صفحات 30 تا 37.
1
عرفانی فرد،س. و موصلو، م.، 1392. ارزیابی روش های اندازه گیری تاج درختان شاخه زاد در جنگل های زاگرس با استفاده از تصاویر هوایی Ultracam- D. مجله منابع طبیعی ایران. دوره 66، شماره 4، صفحات 413 تا 426.
2
منصوری، ج.،1380. راهنمای صحرایی پرندگان ایران. انتشارات کتاب فرزانه. 517 صفحه.
3
Aghakuchakafshari, S.; Shokohi, T.; Aghili, R. and Badali, H., 2012. Epidemiology and molecular characterization of Cryotococcus neoformans isolated from pigeon excreta in Mazandaran province, Northern Iran. Journal of Medical Mycology. Vol. 22, pp: 160-166.
4
Aghanajafizadeh, S.; Heydari, F.; Naderi, G. and Hemami, M.R., 2010. Nest-hole site selection by Syrian woodpecker (Dendropus syriacus) in Baghshadi protected area, Yazd, Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 53, pp: 1-6.
5
Aghanajafizadeh, S.; Eslami, K.; Abbasian, H. and Heydari, F., 2014. Nest-site selection by the Woodchat Shrike (Lanius senator) in Boroyeh Wildlife Sanctuary, Inner Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 60, pp: 20-23.
6
Birdlife international. 2014. Wood Pigeon. Retrieved Mars 20., 2014, from http://www. Birdlife international.org.
7
Fey, K.; Vuorisalo, T.; Lehikoinen, A. and Vesa, S., 2015. Urbanisation of the wood pigeon (Columbapalumbus) in Finland. Landscape and Urban Planning. Vol. 134, pp: 188-194.
8
IUCN Red List of Threatened Species. 2015. Columba palumbus. Retrieved August 20, 2015, from http://www.iucnredlist.org.
9
Jokimäki, J. and Suhonen, J., 1998. Distribution and habitat selection of wintering birds in urban environments. Landscape and Urban Planning. Vol. 39, pp: 253-263.
10
Kirak, D.A. and Hobson, K.A., 2001. Bird habitat relationships in jack pine boreal forests. Forest Ecology and Management. Vol. 147, pp: 217-243.
11
Moon, R.D. and Ziegler, H.P., 1979. Food preferences in the pigeon (Columba livia). Physiology and Behavior. Vol. 22, pp: 1171-1182.
12
Mondloch, C.J., 1995. Chick hunger and begging affect parental allocation of feedings in pigeon, Animal Behaviour. Vol. 49, pp: 601-613.
13
Oliveira, P.; Menezes, D.; Jones, M. and Nogales, M., 2006. The influence of fruit abundance on the use of forest and cultivated field habitats by the endemic Madeira laurel pigeon Columba trocaz: Implications for conservation. Biological Conservation. Vol. 130, pp: 538-548.
14
Perea, R. and Gutiérre, G., 2016. Introducing cultivated trees into the wild: Wood pigeons as dispersers of domestic olive seeds. Acta ecologica. Vol. 71, pp: 73-79.
15
Yang, Y.; Qiao, j.; Combreau, O.; Gao, X. and Zhong, W., 2003. Breeding Habitat Selection by the Houbara Bustard Chlamydotis [undulata] macqueenii in Mori, Xinjiang, China. Zoological studies. Vol. 43, pp: 470-475.
16
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر سطوح مختلف گیاه دارویی خار مریم (Silybum Marianum) و آنتی بیوتیک کوتریموکسازول بر متابولیت های خونی مرغان گوشتی سویه راس
گیاه خار مریم ازجمله گیاهان دارویی مفید است که عصاره آن خاصیت آنتی اکسیدانی دارد و محافظ کبد است. هدف از این تحقیق بررسی تاثیر سطوح مختلف گیاه دارویی خار مریم و آنتی بیوتیک کوتریموکسازول بر متابولیت های خونی مرغان گوشتی سویه راس میباشد. در این آزمایش خارمریم در سه سطح صفر، 0/3 و 3 درصد و آنتیبیوتیک کوتریموکسازول در دو سطح صفر و 2 گرم بر کیلوگرم با 3 تکرار درنظر گرفته شد. در سن 42 روزگی متابولیت های خونی اندازه گیری شدند. متابولیت ها عبارت از مقدار گلوکز، کلسترول، زمان پروترومبین (PT)، اسید اوریک، کراتینین و بیلی روبین بود. اطلاعات حاصل از اندازه گیری متابولیت ها با روش مدل خطی کلی (GLM) و نرم افزار آماری SAS تجزیه و تحلیل شدند. اثر آنتی بیوتیک کوتریموکسازول بر گلوکز خون معنی دار شد (0/05>P). اثر سطوح مختلف خار مریم بر کلسترول خون مرغان مورد آزمایش معنی دار شد (0/05>P). اثر آنتی بیوتیک کوتریموکسازول بر کلسترول خون بسیار معنی دار شد (0/01>P). اثر سطوح مختلف خار مریم بر اسید اوریک و کراتینین خون مرغان مورد آزمایش معنی دار شد (0/05>P). اثر سطوح مختلف خار مریم بر بیلی روبین خون بسیار معنی دار شد (0/01>P). اختلاف بین میانگین سطوح مختلف خار مریم و آنتیبیوتیک کوتریموکسازول برای زمان پروترومبین (PT) معنی دار شد (0/05>P). استفاده از سطوح مختلف خار مریم سبب کاهش مشکلات کبدی شده است، زیرا مقادیر آنزیم های کبدی ترشح شده در خون کاهش یافته است. سطح 3 درصد خار مریم بیش ترین اثر حفاظتی را در کبد دارد.
http://www.aejournal.ir/article_66582_b3771c5a1f319202372df16015ea7442.pdf
2018-03-21
73
78
اسید اوریک
خار مریم
مرغان گوشتی
سیلی مارین
کوتریموکسازول
شهاب الدین
قره ویسی
s.gharavysi@googlemail.com
1
گروه علوم دامی، واحد قائم شهر، دانشگاه آزاد اسلامی قائم شهر، ایران
LEAD_AUTHOR
ابراهیمی، ر.؛ محمدآبادی، ط.؛ ساری، م.؛ سالاری، س.؛ ضمیری، م. و بیگی نصیری، م.، 1392. اثر سیلیمارین بر تنش اکسیداتیو ایجاد شده توسط سرب در جوجه های گوشتی. نشریه پژوهش های علوم دامی ایران. جلد 5، شماره 4، صفحات 302 تا 312.
1
پورامینی،پ.، 1390. گیاه دارویی خار مریم. مجله اینترنتی بلوط آبی. تهران. ایران.
2
جمشیدی، ا.؛ احمدی آشتیانی، ح.؛ غلام حسینی، ب. و بکایی، س.، 1386. مطالعه اثرات تجویزی خوراک عصاره گیاه خار مریم (سیلیمارین) بر تغییرات بافتی و بیوشیمیایی ناشی از آفلاتوکسین در طیور گوشتی. فصلنامه گیاهان دارویی. سال 6، دوره 4، شماره 24.
3
زرگری،ع.، 1375. گیاهان دارویی. موسسه انتشارات و چاپ دانشگاه تهران، جلد سوم. صفحات 34 تا 38.
4
شلایی، م. و حسینی، س.م.، 1394. بررسی اثر کاربرد گیاهان دارویی خرفه و خار مریم در جیره غذایی بر فعالیت آنزیم ها، متابولیت های خونی و خصوصیات تخم مرغ در مرغان تخم گذار. نشریه علوم دامی (پژوهش و سازندگی). شماره 106، صفحات 91 تا 102.
5
گایتون، ا.س. و هال، ج.ا.، 1394. فیزیولوژی پزشکی. ترجمه ابوالفضل ارجمند. انتشارات جامعه نگر. تهران. ایران.
6
فانی مکی، ا.؛ابراهیم زاده، ا. و انصاری نیک، ح.، 1392. اثر گیاهان دارویی خار مریم (Silybum marianum L.) و آویشن
7
(Thymus vulgaris) بر سیستم ایمنی و برخی از فرآسنجه های خونی در جوجه های گوشتی. مجله آسیب شناسی درمانگاهی دامپزشکی. دوره 7، شماره 2، پیاپی 26.
8
Alcicek, A.; Bozkurt, M. and Cabuk, M., 2003. The effect of an essential oil combination derived from selected herbs growing wild in Turkey on broiler performance. South African Journal of Animal Science. Vol. 33, No. 2, pp: 89-94.
9
Hernandez, F.; Madrid, J.; Garcia, V.; Orengo, J. and Megias, M.D., 2004. Influence of two plants extracts on broiler performance, digestibility and digestive organ size. Poultry Science. Vol. 83, pp: 169-174.
10
Kalorey, D.R.; kurkure, N.V.; Ramgaonkar, I.S.; Sakhare, P.S.; Warke, S. and Nigot, N.K., 2005. Effect of polyherbal feed supplement Growell during induced aflatoxicosis, ochratoxicosis and combined mycotoxicoses in broilers. Poultry Science. Vol. 65, No. 12, pp: 2239-2245.
11
National Research Council. 1994. Nutrient Requirements of poultry, 9th rev. ed. National Academy press, Washington DC.
12
Radco, L. and Cybulski, W., 2007. Application of silymarin in humam and animal medicine. Wounds A Compendium of Clinical Research and Practice. Vol. 1, No. 1, pp: 22-26.
13
Schiavone, A.; Righi, F.; Quarantelli, A.; Bruni, R.; Serventi, P. and Fusari, A., 2007. Use of Silybum marianum fruit extract in broiler chicken nutrition: influence on performance and meat quality. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition. Vol. 91, pp: 256-262.
14
Sobolova, L.; Skottova, N.; Vecera, R. and Urbanek, K., 2006. Effect of silymarin and its polyphenolic fraction on cholesterol absorption in rats. Pharmacological Research. Vol. 53, pp: 104-112.
15
Tedesco, D.; Steidler, S.; Galletti, S.; Tameni, M.; Sonzogni, O. and Ravarotto, L., 2004. Efficacy of Silymarin-Phospholipid Complex in Reducing the Toxicity of Aflatoxin B1 in Broiler Chicks. Poultry Science. Vol. 83, pp: 1839-1843.
16
Tyler, V., 1993. The Honest Herbal. Binghamton, N. Y: Pharmaceutical Products.
17
Vogel, G.; Trost, W. and Brraatz, R., 1975. Pharmacodynamics, site and mechanism of action Silybum marianum (L.) Gaertn. 1. Acute toxicology or tolerance, general and specific (liver-) Pharmacology. Arzneimittel-Forschung-Drug Research. Vol. 25, No. 1, pp: 82-89.
18
SAS Institute. 1999. SAS User’s Guide. SAS Inst. Inc., Cary, NC.
19
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات پودر دیواره سلولی مخمر (ساکارومایسس سرویسیه) همراه با مکمل اسید بوتیریک بر عملکرد رشد، خصوصیات لاشه، جمعیت میکروبی ایلئوم و فراسنجه های بیوشیمیایی سرم در جوجه های گوشتی
آزمایشی بهمنظور مطالعه دو مکمل خوراکی بر عملکرد تولیدی، فراسنجههای خونی و جمعیت میکروبی روده جوجه گوشتی انجام شد. تعداد 200 قطعه جوجه گوشتی راس 308 (مخلوط دو جنس) در 4 تیمار آزمایشی با 5 تکرار و در هر تکرار 10 قطعه جوجه توزیع شد. در این آزمایش از 4 تیمار آزمایشی بهترتیب شامل: جیره شاهد، جیره شاهد حاوی3 گرم بر کیلوگرم اسیدبوتیریک، جیره شاهد حاوی 2/5 گرم بر کیلوگرم دیواره سلولی مخمر و جیره شاهد حاوی مخلوط اسیدبوتیریک و دیواره سلولی مخمر استفاده شد. نتایج نشان داد که تیمارهای آزمایشی بر صفات عملکرد رشد جوجههای گوشتی تاثیری نداشتند. در مورد اجزای لاشه، افزودن مکمل بوتیریک اسید وزن نسبی ران را در جوجههای گوشتی کاهش داد (0/05>p). جمعیت رودهای سالمونلا در جوجههای گوشتی تغذیه شده با دیواره سلولی مخمر همراه با بوتیریک اسید کاهش معنیداری داشت (0/05>p). برعکس، تیمار دیواره سلولی مخمر همراه با بوتیریک اسید سبب افزایش معنیدار جمعیت لاکتوباسیلوس در ایلئوم شد (0/05>p). تیمارهای آزمایشی تاثیری بر جمعیت اشریشیا کلی و کل باکتریهای روده نداشتند. غلظت آسپارتات آمینو ترانسفراز (AST) کبدی در جوجههای تغذیه شده با جیره شاهد بیش ترین مقدار را نشان داد (0/05>p). می توان نتیجه گیری کرد که افزودن دیواره سلولی مخمر و بوتیریک اسید اثر منفی بر عملکرد رشد جوجه های گوشتی نداشت. علاوه بر این، جمعیت میکروبی روده در جوجه های گوشتی تغذیه شده با مکمل های دیواره سلولی مخمر و بوتیریک اسید بهبود یافت.
http://www.aejournal.ir/article_66689_7ead8cfa6603dfbb7097e23d392b11a0.pdf
2018-03-21
79
86
جوجه
بوتیریک اسید
مخمر
متابولیت های خون
عملکرد
وحید
رضایی پور
vrezaeipour@gmail.com
1
گروه علوم دامی، واحد قائم شهر، دانشگاه آزاد اسلامی قائم شهر، ایران
LEAD_AUTHOR
سینا
نهاوندی
sina3532@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، واحد قائم شهر، دانشگاه آزاد اسلامی قائم شهر، ایران
AUTHOR
روستایی علی مهر، م.؛ غمگسار، م. و حقیقیان رودسری، م.، 1393. اثر افزودن پری بیوتیک ساف مانان به جیره بر فلور میکروبی و عملکرد جوجه های گوشتی. تولیدات دامی. دوره 16، شماره 1، صفحات 21 تا 29.
1
طهماسبی، ع.؛ فلکیان، ک.؛ مقدم، غ.؛ تقی زاده، ا. و بیات کوهسار، ج.، 1389. تاثیر ساکارومایسس سرویسیا، اسیدفرمیک و ویرجینیا مایسین بر عملکرد، خصوصیات لاشه و میکروفلورای دستگاه گوارش جوجه های گوشتی. نشریه پژوهش های علوم دامی ایران. سال 2، شماره 1، صفحات 61 تا 68.
2
Abdelqader, A. and Al Fattah, A.R., 2016. Effect of dietary butyric acid on performance, intestinal morphology, microflora composition and intestinal recovery of heat stressed broilers. Livestock Science. Vol. 183, pp: 78-83.
3
Abdelrahman, M.M., 2013. Effects of feeding dry fat and yeast culture on broiler chicken performance. Turkish Journal of Veterinary and Animal Sciences. Vol. 37, pp: 31-37.
4
Canibe, N.; Steien, S.H.; Overland, M. and Jensen, B.B., 2001. Effect of K-diformate in starter diets on acidity, microbiota, and the amount of organic acids in the digestive tract of piglets, and on gastric alterations. Journal of Animal Science. Vol. 79, pp: 2123-2133.
5
Corduk, M.; Ceylan, N. and Ildiz, F., 2007. Effect of dietary energy density and L-carnitine supplementation on growth performance, carcass traits and blood parameters of broiler chickens, South African Journal of Animal Science. Vol. 37, pp: 65-73.
6
Davidson, P.M., 2001. Chemical preservatives and natural antimicrobial compounds. In: Doyle, M.P., Beuchat, L.R., Montville, T.J. (Eds.), Food Microbiology- Fundamentals and Frontiers, 2nd ed. American Society for Microbiology, Washington, DC. pp: 593-627 (Chapter 29).
7
Dehghani-Tafti, M. and Jahanian, R., 2015. Effect of supplemental organic acids on performance, carcass characteristics, and serum biochemical metabolites in broilers fed diets containing different crude protein levels. Animal Feed Science and Technology. Vol. 211, pp: 109-116.
8
Eftekhari, A.; Rezaeipour, V. and Abdullahpour, R., 2015. Effects of acidified drinking water on performance, carcass, immune response, jejunum morphology, and microbiota activity of broiler chickens fed diets containing graded levels of threonine. Livestock Science. Vol. 180, pp: 158-163.
9
Ganner, A. and Schatzmayr, G., 2012. Capability of yeast derivatives to adhere enteropathogenic bacteria and to modulate cells of the innate immune system. Appiled Microbiology and Biotechnology. Vol. 95, pp: 289-297.
10
Gao, J.; Zhang, H.J.; Yu, S.H.; Wu, S.G.; Yoon, I.; Quigley, J.; Gao Y.P. and Qi, G.H., 2008. Effects of yeast culture in broiler diets on performance and immunomodulatory functions. Poultry Science. Vol. 87,pp: 1377-1384.
11
Haldar, S.; Ghosh, T.K. and Bedford, M., 2011. Effects of yeast (Saccharomyces cerevisiae) and yeast protein concentrate on production performance of broiler chickens exposed to heat stress and challenged with Salmonella enteritidis. Animal Feed Science and Technology. Vol. 168, pp: 61-71.
12
Hashemi, S.R.; Zulkifli, I.; Davoodi, H.; Zunita, Z. and Ebrahimi, M., 2012. Growth performance, intestinal microflora, plasma fatty acid profile in broiler chickens fed herbal plant (Euphorbia hirta) and mix of acidifiers. Animal Feed Science and Technology. Vol. 178, pp: 167-174.
13
Jahanian R. and Golshadi, M., 2015. Effect of dietary supplementation of butyric acid glycerides on performance, immunological responses, ileal microflora, and nutrient digestibility in laying hens fed different basal diets. Livestock Science. Vol. 178, pp: 228-236.
14
Kogan, G. and Kocher, A., 2007. Role of yeast cell wall polysaccharides in pig nutrition and health protection. Livestock Science. Vol. 109, pp: 161-165.
15
Levy, A.W.; Kessler, J.W.; Fuller, L.; Williams, S.; Mathi, G.F.; Lumpkins, B. and Valdez, F., 2015. Effect of feeding an encapsulated source of butyric acid (ButiPEARL) on the performance of male Cobb broilers reared to 42 d of age. Poultry Science. Vol. 94, pp: 1864-1870.
16
Li, X.H.; Chen, Y.P.; Cheng, Y.F.; Yang, W.L.; Wen, C. and Zhou, Y.M., 2016. Effect of yeast cell wall powder with different particle sizes on the growth performance, serum metabolites, immunity and oxidative status of broilers. Animal Feed Science and Technology. Vol. 212, pp: 61-89.
17
Munyaka, P.M.; Echeverry, H.; Yitbare, A.; Camelo Jaimes, G.; Sharif, S.; Guenter, W.; House, J.D. and Rodriguez-Lecompte, J.C., 2012. Local and systemic innate immunity in broiler chickens supplemented with yeast derived carbohydrates. Poultry Science. Vol. 91, pp: 2164-2172.
18
Rezaeipour, V.; Fononi, H. and Irani, M., 2012. Effects of dietary L-threonine and Saccharomyces cerevisiae on performance, intestinal morphology and immune response of broiler chickens. South African Journal of Animal Science. Vol. 42, pp: 266-273.
19
Spring, P.; Wenk, C.; Dawson, K.A. and Newman, K.E., 2000. The effects of dietary mannanoligosaccharides on cecal parameters and the concentrations of enteric bacteria in the ceca of salmonella-challenged broiler chicks. Poultry Science. Vol. 79, pp: 205-211.
20
Tian, X.; Shao, Y.; Wang, Z. and Guo, Y., 2016. Effects of dietary yeast-glucans supplementation on growth performance, gut morphology, intestinal Clostridium perfringens population and immune response of broiler chickens challenged with necrotic enteritis. Animal Feed Science and Technology. Vol. 215, pp: 144-155.
21
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثرات جایگزینی ضایعات جوجه کشی به جای کنجاله سویا بر فراسنجه های خونی و وزن تخم مرغ در مرغ تخم گذار
مطالعه حاضر به منظور ارزیابی اثر سطوح مختلف پودر ضایعات جوجه کشی (HWM) بر وزن تخم مرغ و فراسنجه های خونی در مرغ های تخم گذار انجام شد. تعداد 240 قطعه مرغ تخم گذار (سویه ال اس ال) با سن 56 هفته به شش تیمار آزمایشی با چهار تکرار و پنج پرنده به ازای هر تکرار تخصیص یافتند. یک تیمار شاهد به همراه پنج گروه دیگر سطوح 3، 6، 9، 12 و 15 درصد پودر جوجه کشی به جای کنجاله سویا اضافه گردید. در انتهای دوره آزمایش (10 هفته) از هر تیمار تعداد 5 پرنده به طور تصادفی انتخاب و خونگیری از طریق ورید بال به منظور اندازه گیری فراسنجه های خونی، انجام شد. بیش ترین غلظت های سرمی HDL و کلسیم در گروه HWM 12 به دست آمد (0/05>P). وارد کردن HWM به جیره در سطوح 6، 9، 12 و 15 درصد به کاهش معنی دار گلوکز سرم در مقایسه با تیمار شاهد انجامید. ضایعات جوجه کشی در سطح 6 درصد جیره بیش ترین وزن متوسط تخم مرغ را در پی داشته و از این حیث با سایر تیمارها تفاوت معنی داری (0/05>P) داشت و سبک ترین تخم مرغ ها توسط گروه های HWM 9، HWM 12 و HWM 15 تولید شدند. براساس این یافته ها می توان نتیجه گرفت که استفاده از پودر ضایعات جوجه کشی تاثیرات سو بر فراسنجه های خونی و وزن تخم مرغ ندارد.
http://www.aejournal.ir/article_66708_7b0abc46c4219fbcbb63315185180060.pdf
2018-03-21
87
94
پودر ضایعات جوجه کشی
تخم مرغ
فراسنجه های خونی
کنجاله سویا
مرغ تخم گذار
تقی
عادلی مشفق
bersaqom@gmail.com
1
گروه علوم دامی، واحد شهرقدس، دانشگاه آزاد اسلامی شهرقدس، ایران
LEAD_AUTHOR
امیر
فتاح
amir1356fattah@qodsiau.ac.ir
2
گروه علوم دامی، واحد شهرقدس، دانشگاه آزاد اسلامی شهرقدس، ایران
AUTHOR
محمود
هنرور
honarvar.mahmood@qodsiau.ac.ir
3
گروه علوم دامی، واحد شهرقدس، دانشگاه آزاد اسلامی شهرقدس، ایران
AUTHOR
جان محمدی، ح.؛ نصیری مقدم، ح.؛ گلیان، ا.؛ پوررضا، ج. و دانش مسگران، م.، 1393. تعیین تراکم قابلیت هضم حقیقی اسیدهای آمینه پودر گوشت و استخوان در خروس های بالغ لگهورن سکوم برداری شده. مجله علوم دامی ایران. دوره 45، شماره 4، صفحات 327 تا 334.
1
گلیان، ا. و معینی، م.س.، 1374. تغذیه طیور. انتشارات سازمان اقتصادی کوثر. تهران. 526 صفحه.
2
Akkilic, M., 1977. Poultry by product meal as a substitute for fish meal diets for broiler chickens. Ankara universitesi verterinor dergisi. Vol. 24, No. 1, pp: 1-27.
3
Al-Harthi, M.A.; El-Deek, A.A.; Salah El-Din, M. And Alabdeen, A.A., 2010. A nutritional evaluation of hatchery by-product in the diets for laying hens. Egypt Poultry Science. Vol. 30, pp: 339-351.
4
Bains, B.S., 1994. Internal egg quality influence of fertility and hatchability. Roch product LTD. Australia. Word poultry Misset. Vol. 10, No. 11, pp: 35-36.
5
Dibner, J.J. and Ivey, F.J., 1990. Hepatic protein and amino acid metabolism in poultry. Poultry Science. Vol. 69, pp: 1188-1194.
6
FAO. 2008. Poultry in the 21st century: avian influenza and beyond. Proceedings of the International Poultry Conference, Bangkok, 5–7 Nov. 2007, edited by O. Thieme and D. Pilling. FAO Animal Production and Health Proceedings No. 9. Rome. www.fao.org/againfo/resources/en/pubs_aprod .html.
7
JahanianNajafabadi, H.; Nassiri Moghaddam, H.; Pourreza, J.; Eftekhari Shahroudi, F. and Golian, A., 2007. Determination of Chemical Composition, Mineral Contents and Protein Quality of Poultry By-Product Meal. Poultry Science. Vol. 6, pp: 875-882.
8
Hamm, D. and Whitehead, W.K., 1982. Holding techniques for hatchery wastes. Poultry Science. Vol. 61, pp: 1025-1028.
9
Haque, A.K.M.A.; Lynos, J.J. and Vandepopulieve, J.M., 1990. Extrusion processing of broiler starter diets containing ground whole hens, poultry by-product meal, feather or ground feathers. Poultry science. Vol. 70, pp: 234-240.
10
Hsiao, H.Y.; Anderson, D.M. and Dale, N.M., 2006. Levels of b-mannan in soybean meal. Poultry Science, Vol. 85, pp: 1430-1432.
11
Gupta, B., 1988. Availability and utilization of nonconventional feed resources and their utilization by non ruminants in South Asia. International Development Research Centre. OTTAWA. Canada.
12
Kempster, H.L., 1945. The Use of Dried Incubator Offal in Chick Rations. Poultry Science Journal. Vol. 24, No. 5, pp: 396-398.
13
Mahmud, A.; Saima, M.; Abdul Jabbar, A.; Sahota, W.; Hayat, Z. and Zafar Ullah Khan, M., 2015. Effect of feeding hatchery waste meal processed by different techniques on egg quality and production performance of laying hens. Pakistan Journal of Zoology. Vol. 47, pp: 1059-1066.
14
McCaskey, T.A., 1995. Feeding poultry litter as an alternative waste management strategy. In: Steele K (ed) Animal Waste and the Land Water Interface. Lewis-CRC, New York. pp: 475-484.
15
Miller, B.F., 1984. Extruding hatchery waste. Poultry Science Journal. Vol. 63, pp: 1284-1286.
16
Reddy, V.R., 1988. Utilization of poultry by-products by poultry. Poultry Adviser. Vol. 21, No. 8, pp: 39-43.
17
SAS Institute. 2002. SAS Users guide: Statistics. 9.1. SAS Institute Inc., Cary, NC.
18
Smith, W.K., 1978. The amino acid requirement of laying hen: models for calculation.1. Physiological Background. World's Poultry Science Journal. Vol. 34, pp: 81-96.
19
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه چندشکلی ژن اووالبومین و نقش آن در کیفیت خارجی تخم مرغان بومی اصفهان
اووالبومین ازجمله پروتئین های فعال ماتریکس پوسته تخم مرغ است که بر روی کلسیفیکاسیون پوسته تخم مرغ مؤثر می باشد. تحقیق حاضر با هدف مطالعه ارتباط چندشکلی دو ناحیه از اگزون 8 ژن اووالبومین واقع بر روی کروموزوم شماره 2 با برخی از صفات کیفیت خارجی تخم مرغ به کمک تکنیک های RFLP و SSCP در مرغان بومی اصفهان انجام شد. در این پژوهش DNA ژنومی از خون به کمک کیت استاندارد استخراج و نواحی مورد نظر به روش PCR تکثیر شدند. چندشکلی یک ناحیه با طول 199 جفت باز به کمک تکنیک های Mnl1-RFLP و SSCP و در ناحیه ای دیگر با طول 407 جفت باز توسط تکنیک SSCP مورد بررسی قرارگرفتند. به منظور تعیین ژنوتیپ مرغان، الکتروفورز ژل پلی اکریل آمید و رنگ آمیزی نیترات نقره استفاده شد. برای قطعه اول 2 ژنوتیپ ( A1A1و A1A2) با روش RFLP و 3 ژنوتیپ (B1B1، B1B2 و B3B3) با روش SSCP شناسایی شدند. برای قطعه دوم 3 ژنوتیپ (C1C1، C1C2 و C2C2) مشاهده شد. بیش ترین فراوانی های ژنوتیپی متعلق به الگوهای A1A1، B1B2 و C2C2 بود و میانگین های هتروزیگوسیتی به ترتیب 0/33، 0/51 و 0/33 به دست آمد. در تجزیه و تحلیل داده ها هیچ کدام از صفات ارتباط معنی داری با قطعه 199 جفت بازی نشان ندادند (0/05<P). وزن تخم مرغ دارای ارتباط معنی داری با قطعه 407 جفت بازی بود (0/05˂P) که ژنوتیپ C1C2 وزن سبک تری نسبت به دو ژنوتیپ دیگر داشت، اما ارتباط سایر صفات با این قطعه بی معنی بود (0/05<P). نتایج به دست آمده نشان دادند که در مرغ بومی اصفهان ژن اووالبومین دارای چندشکلی نسبتاً بالایی است و می تواند در برنامه های اصلاح نژادی آینده مورد توجه قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_64777_eb7b60559f9e316e8cebcf969f4d29df.pdf
2018-03-21
95
102
چندشکلی
ژن اووالبومین
صفات کیفیت خارجی تخم مرغ
مرغ بومی اصفهان
مائده
قنبریان بروجنی
ghanbariuanm@yahoo.com
1
دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 15739-49138
LEAD_AUTHOR
مجتبی
آهنی آذری
mojtaba_9@yahoo.com
2
دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 15739-49138
AUTHOR
سعید
حسنی
saeedh_2000@yahoo.com
3
دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 15739-49138
AUTHOR
محمد رضا
عبادی
mrebadi@yahoo.com
4
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات علوم کشاورزی و منابع طبیعی استان اصفهان، صندوق پستی: 199-81785
AUTHOR
امامقلی بگلی، ح.؛ زره داران، س.؛ حسنی، س.؛ خان احمدی، ع. ر. و عباسی، م. ع.، 1389. برآورد همبستگی ژنتیکی و فنوتیپی صفات عملکرد و کیفیت تخم مرغ در مرغان بومی استان یزد. مجله پژوهش های علوم دامی. دوره 4، شماره 1، صفحات 89 تا 97.
1
پیرانی، ن. ا.؛ محمدهاشمی، آ.؛ علیجانی، ص.؛ رضازاده گلی، ر. و قنبری، ص.، 1388. تجزیه و تحلیل مولکولی جمعیتی از مرغ بومی مازندران با استفاده از توالی ناحیه HVR-I ژنوم میتوکندری. مجله بیوتکنولوژی کشاورزی. دوره 1، شماره 2، صفحات 53 تا 66.
2
صالحی نسب، م.، 1391. برآورد پارامترهای ژنتیکی و ردیابی ژن های بزرگ اثر برای برخی صفات اقتصادی مرغ های بومی استان اصفهان با استفاده از روش های مختلف آماری. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان.
3
قره ویسی، ش.ا.؛ ایرانی، م.؛ عبدالله پور، ع.ا. و عباسی، ح.ع.، 1391. بررسی چندشکلی اگزون 9 و 11 ژن گیرنده لپتین در مرغ بومی مازندران با روش PCR-RFLP. مجله ژنتیک نوین. دوره 7، شماره 2، صفحات 175 تا 178.
4
Akinyemi, M.O.; Osaiyuwu, O.H. and Ajayi, A.Y., 2014. Biochemical characterisation of Muscovy and Mallard ducks in Nigeria. I.J.S.N. Vol. 5, No. 3, pp: 557-562.
5
Bing, L., 2014. Influence of Eggshell Ultrastructural Organization on Hatchability and Candidate Genes Associated with Eggshell Quality Traits. (Doctoral dissertation), China Agricultural University. Dissertation URL:/showinfo-194-683665-0.html.
6
Bvanendranv, U., 1967. Egg-white polymorphisms and economic characters in domestic fowl. British Poultry Science. Vol. 8, pp: 119-129.
7
Dunn, I.C.; Joseph, N.T.; Bain, M.; Edmond, A.; Wilson, P.W.; Milona, P.; Nys, Y.; Gautron, J.; Schmutz, M.; Preisinger, R. and Waddington, D., 2008. Polymorphisms in eggshell organic matrix genes are associated with eggshell quality measurements in pedigree Rhode Island Red hens. Animal Genetics. Vol. 40, pp: 110-114.
8
Dunn, I.C.; Rodriguez Navarro, A.B.; McDade, K.; Schmutz, M.; Preisinger, R.; Waddington, D.; Wilson, P. W. and Bain, M.M., 2012. Genetic variation in eggshell crystal size and orientation is large and these traits are correlated with shell thickness and are associated with eggshell matrix protein markers. Animal Genetics. Vol.43, No. 4, pp: 410-418.
9
Fan, Y.F.; Hou, Z.C.; Yi, G.Q.; Xu, G.Y. and Yang, N., 2013. The sodium channel gene family is specifically expressed in hen uterus and associated with eggshell quality traits. BMC Genetics. Vol. 14, pp: 90-100.
10
Gautron, J. and Nys, Y., 2006. Eggshell matrix proteins and natural defenses of the egg. Symposium COA/INRA Scientific Cooperation in Agriculture, Tainan (Taiwan, R.O.C.). pp: 159-165.
11
Gautron, J.; Mann, K.; Righetti, P.G.; Rehault Godbert, S.; Jonchere, V.; Herve Grepinet, V. and Nys, Y., 2009. Functional genomics reveals numerous novel egg proteins. 19th European Symposium on the Quality of Poultry Meat and 13th European Symposium on the Quality of Eggs and Eggs Products, Turku, Finland.
12
Goto, T.; Ishikawa, A.; Yoshida, M.; Goto, N.; 5, Umino, T.; Nishibori, M. and Tsudzuki, M., 2014. Quantitative trait loci mapping for external egg traits in F2 chickens. J. Poult. Sci. Vol. 51, pp: 118-129.
13
Hincke, M.T.; Tsang, C.P.; Courtney, M.; Hill, V. and Narbaitz, R., 1995. Purification and immunochemistry of a soluble matrix protein of the chicken eggshell (Ovocleidin17). Calcified Tissue International. Vol. 56,pp: 578-583.
14
Hincke, M.T. 1995. Ovalbumin is a component of the chicken eggshell matrix. Connect Tissue Res Journal.Vol. 31, No.3, pp: 227-33.
15
Hou, Q.R.; Wang, J.Y.; Wang, H.H.; Li, Y.; Zhang, G.X. and Wei, Y., 2010. Analysis of polymorphisms in exons of the LYZ gene and effect on growth traits of Jinghai yellow chicken. Int. J. Poult. Sci. Vol. 9, No. 4, pp: 357-362.
16
Huang, H.L.; Huang, L.T. and Cheng, Y.S., 2013. A novel SNP marker of ovalbumin gene in association with duck hatchability. Theriogenology. Vol. 79, pp: 1218-1223.
17
Johari, S.; Ekasari, S. and Kurniant, E., 2013. Genetic variation in three breeds of Indonesian local ducks based on blood and egg white protein polymorphism. J. Indonesian trop. Anim. agric. Vol. 38, No. 1, pp: 20-26.
18
Kinoshita, K.; Shimogiri, T.; Okamoto, S.; Kawabe, K.; Ishizuka, J.; Ibrahim, H.R. and Maeda, Y., 2003. Identification of ovalbumin phenotypes of the Asian indigenous chicken populations using polymerase chain reaction-restriction fragment length polymorphism. Animal Science Journal. Vol. 74, pp: 355-362.
19
Liu, Z.; Zheng, Q.; Zhang, X. and Lu, L., 2013. Microarray analysis of genes involved with shell strength in layer shell gland at the early stage of active calcification. Asian-Australas. J. Anim. Sci. Vol. 26, No. 5, pp: 609-624.
20
Mahrous, M.Y.; Radwan, L.M. and El-Dlebshany, A.E., 2013. Shell quality and ultrastructural characteristics of eggshell in the 15TH generation of chickens selected for egg production traits. Egyptian J. Anim. Prod.Vol. 50, No. 1, pp: 13-18.
21
Miksik, I.; Sedlakova, P.; Lacinova, K.; Pataridis, S. and Eckhardt, A., 2010. Determination of insoluble avian eggshell matrix proteins. Anal Bioanal Chem. Vol. 397, pp: 205-214.
22
Mine, Y., 2008. Egg Bioscience and Biotechnology. New Jersey: John Wiley & Sons, Inc., Hoboken. pp: 19-24.
23
Ning, Z.; Wang, D.; Liao, B.; Zhang, Q. and Gao, Y., 2014. Polymorphisms of genes are associated with eggshell ultrastructural organization in pedigree Rhode Island White. APPC, Jeju Island, South Korea.
24
Obeidah, A.; Merat, P. and Duradn, L., 1977. Polymorphism of egg white proteins egg weight and components weight in the Fayoumi hen. Ann. Genet. Sel. anim. Vol. 9, No. 3, pp: 301-306.
25
Panheleux, M.; Nys, Y.; Williams, J.; Gautron, J.; Boldicke, T. and Hincke, M.T., 2000. Extraction and quantification by ELISA of eggshell organic matrix proteins (Ovocleidin-17, Ovalbumin, Ovotransferrin) in shell from young and old hens. J. Poult. Sci. Vol. 79, pp: 580-588.
26
Radwan, L.M.; Fati, M.M.; Gala, A. and Zein El-Dein, A., 2010. Mechanical and ultrastructural properties of eggshell in two Egyptian native breeds of chicken. Int. J. Poult. Sci. Vol. 9, No. 1, pp: 77-81.
27
Sun, C.J.; Chen, S.R.; Xu, G.Y.; Liu, X.M. and Yang, N., 2012. Global variation and uniformity of eggshell thickness for chicken eggs. J. Poult. Sci. Vol. 91, pp: 2718-2721.
28
Sun, C.; Qu, L.; Yi, G.; Yuan, J.; Duan, Z.; Shen, M.; Qu, L.; Xu, G.; Wang, K. and Yang, N., 2015. Genome-wide association study revealed a promising region and candidate genes for eggshell quality in an F2 resource population. BMC Genomics. Vol. 16, pp: 565-579.
29
Vilkki, J., 2007. Application of genomic approaches in egg quality research. 18th European symposium on the quality of poultry meat and 12th European symposium on the quality of eggs and egg products. Prague, Czech Republic.
30
Zhang, Q.; Zhu, F.; Liu, L.; Zheng, C.W.; Wang, D.H.; Hou, Z.C. and Ning, Z.H., 2015. Integrating transcriptome and genome re-sequencing data to identify key genes and mutations affecting chicken eggshell qualities. PLoS ONE. Vol. 10, No. 5, pp: 1-16.
31
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تغییرات عیار آنتی بادی ویژه واکسن نیوکاسل در جوجههای گوشتی به دنبال دریافت مکمل گیاهی بیوهربال (حاوی عصاره سیر و آویشن)
در این پژوهش سی و سه هزارقطعه جوجه یک روزه گوشتی خریداری و به طور تصادفی به 2 گروه مساوی تقسیم شدند. جوجه های گروه A، مکمل گیاهیبیوهربال را به میزان 200 میلی لیتر در هزار لیتر آب آشامیدنی در کل دوره پرورش دریافت کردند. جوجه های گروه B به عنوان گروه شاهد، مکملگیاهیبیوهربال را دریافت نکردند. جوجه های هر دو گروه ضد بیماری نیوکاسل با واکسن ویتابرون در سن یک روزگی به روش اسپری، درسن 9 روزگی با و اکسن B1 به روش قطره چشمی، درسن 20 روزگی با واکسن کلون و درسن 30 روزگی با واکسن لاسوتا در آب آشامیدنی ایمن شدند. در روزهای 0 (قبل از واکسیناسیون) و پایان دوره از 35 قطعه از هر گروه، به طور تصادفی خونگیری انجام شد و عیار پادتن علیه واکسن نیوکاسل با آزمایش HI اندازه گیری شد. نتایج نشان داد که دریافت 200 میلی لیتر مکمل گیاهیبیوهربال در هزار لیتر آب آشامیدنی، عیار پادتن ویژه ویروس نیوکاسل را به طور معنی داری در مقایسه با گروه شاهد افزایش داد (0/05>P).
http://www.aejournal.ir/article_65617_1a49c77232686414102385f5c369b404.pdf
2018-03-21
103
106
مکمل گیاهی بیوهربال
ویروس نیوکاسل
پاسخ ایمنی
فروغ
طلازاده
ftalazade@gmail.com
1
بخش بیماری های طیور، گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
منصور
میاحی
m_mayahi@yahoo.com
2
بخش بیماری های طیور، گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
کیاوش
هوشمندی
kiavash.hushmandi@gmail.com
3
دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
Abdulkarimi, R., 2011. Immune response of broiler chickens supplemented with Thyme exteract (thymus vulgaris) in drinking water. Annals of Biological Research. Vol. 2, No. 6, pp: 208-212.
1
Amooz mehr, A. and Dastar, B., 2009. Effects of alcoholic extract of two herbs (garlic and thymus) on the performance and blood lipids of broiler chickens. Journal of Agricultural Science and Natural Resources. Vol. 16, pp: 1-8.
2
Basílico, M.Z., 1999. Inhibitory effect of some spice essential oils on aspergillus ochraceus NRRL 3174 growth and ochratoxin a production. Letters in Applied Microbiology. Vol. 29, pp: 238-241.
3
Bolukbasi, S.C.; Erhan. M.K. and Ozkan, A., 2006. Effect of dietary thyme oil and vitamin on growth, lipid oxidation, meat fatty acid composition and serum lipoproteins of broilers, South African Journal of Animal Science. Vol. 36, pp: 189-196.
4
Feizi, A.; Bijanzad, P. and Kaboli, K., 2013. Effects of thyme volatile oils on performance of broiler chickens. European Journal Experimental Biology. Vol. 3, No. 1,pp: 250-254.
5
Gallili, G.E. and Ben-Nathan, D., 1998. Newcastle disease vaccine. Biotechnology Advances. Vol. 16, pp: 343-366.
6
Kalantar, M.; Saki, A.A.; Zamani, P. and Aliarabi, H., 2010. Effect of drinking thyme essence on performance, energy and protein efficiency and economical indices of broiler Chickens. Animal Science Journal (Pajouhesh & Sazandegi). Vol. 92, pp: 59-67.
7
Lee, K.W.; Evert, H.; Kappert, H.J.; Frehner, M.; Losa, R. and Beynen, A.C., 2003. Effect of dietary essential oils on growth performance, digestive enzymes and lipid metabolism in female broiler chicken. British Poultry Science. Vol. 44, pp: 7- 45.
8
Moshafi, M.H.; Mansouri, S.; Sharififar, F. and Khoshnoodi, M., 2005. In vitro evaluation of Antibacterial and antioxidant effects of the essential oil and extract of Thyme exteract (thymus vulgaris). Journal of Kerman University of Medical Science. Vol. 4, pp: 33-43.
9
Nobakht, A. and Mehmannavaz, Y., 2010. Investigation the effects of using of ziziphora (Thymus Vulgaris L.), peppermint (Lamiacea methapiperita), Menta pulagum (oreganum vulgar) Medical plants on performance, EggQuality, Blood and Immunity parameters of Laying Hens, Iranian J of Animal Science. Vol. 41, pp: 129-136.
10
Patterson, T.A. and Barkholder, K.M., 2003. Application of prebiotics and probiotics in poultry production, Journal of Poultry Science. Vol. 82, pp: 627-637.
11
Rafiee, A.; Rahimian, Y.; Zamani, F. and Asgarian, F., 2013. Effect of use ginger (Zingiber officinale) and thymus (Thymus vulgaris) extract on performance and some hematological parameters on broiler chicks. Scientia Agriculturae. Vol. 4, No. 1, pp: 20-25.
12
Rahimi, S.; Teymouri Zadeh, Z.; Karmi Torshizi, M.A.; Omidbaigi, R. and Rokni, H., 2011. Effect of the Three Herbal Extracts on Growth Performance, Immune System, Blood Factors and Intestinal Selected Bacterial Population in Broiler Chickens. Journal of Agricultural Science Technology. Vol. 13, pp: 527-539.
13
Saleh, N.; Allam, T.; El-latifi, A.A. and Ghazy, E., 2014. The effects of dietary supplementation of different levels of Thyme (Thymus vulgaris) and Ginger (Zingiber officinale) essential oils on performance, hematological, biochemical and immunological parameters of broiler chickens. Global Veterinaria. Vol. 12, No. 6, pp: 736-744.
14
Samman, S. and Cook, N.C., 1996. Flavonoids chemistry, metabolism, cardio protective effects, and dietary sources. Journal of Nutritional Biochemistry. Vol. 7, pp: 66-76.
15
Sarica, S.; Ciftci, A.; Demir, E.; Kilinic, K. and Yildirim, Y., 2005. Use of an antibiotic growth promoter and two herbal natural feed additives with and without exogenous enzymes in wheat based broiler diets. South African Journal of Animal Science. Vol. 35, No. 1, pp: 61-72.
16
Shaariat-Samsam, H., 2005. [Selected herbal medicine] Persian. Isfahan: Mani Press. pp: 9-30.
17
Tschirch, H., 2000. The use of natural plant extracts as production enhancers in modern animal rearing practices. Zeszyly Naukowe Akademici Rolniczej Wroclaw, Zootechnik, XXV. Vol. 376, pp: 25-39.
18
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی صفات ریختشناختی و ریختسنجی سمندر تاجدار جنوبی Triturus karelinii در استان مازندران
سمندر تاجدار جنوبی Triturus kareliniiاز خانواده Salamandridae بوده و در استان های مازندران، گلستان، گیلان و بخشهایی از اردبیل، آذربایجان شرقی وغربی پراکنش دارد. سطح پشتی این سمندر قهوه ای تیره، دارای تاج پشتی در نمونه های نر، دم از طرفین فشرده و در سطح شکمی و زیر سر دارای خال های سیاه رنگ می باشد. در این تحقیق 57 نمونه (14 ماده، 24 نر و 19 لارو) از استان مازندران و متعلق به موزه جانورشناسی دانشگاه گلستان از نظر صفات مورفولوژیک و 11 صفت مورفومتریک با کولیس دیجیتال با دقت ( 0/01 میلی متر) مورد مطالعه قرارگرفت. جنسیت نمونه ها با وجود تاج پشتی و نوار نقره ای روشن در طرفین دم در نرها و عدم وجود آن درماده ها شناسایی شد. طول پوزه تا مخرج در نرها 62/35 -47/59، در ماده ها 64/05 -57/76 و در لاروها 39/03 -32/73 به دست آمد. نسبت طول اندام حرکتی جلویی به عقبی در لاروها 0/99-0/79 (0/053 ±0/88)، در نرها 1/03-0/75 (0/079±0/91)، در ماده ها 1/07-0/81 (078/±0 0/93)، هم چنین نسبت پهنای سر به طول سر در لاروها 0/90 -0/65 (0/072±0/79)، در نرها 0/99-0/65 (0/084±0/81)، در ماده ها 0/99- 0/68 (0/097± 0/84)، علاوه بر این نسبت طول دم به طول کلی بدن در لاروها 0/54- 0/47 (0/019±0/51)، در نرها 0/52- 0/45 (0/021±0/48)، در ماده 0/51- 0/45(0/022± 0/48) و نسبت طول سر به طول پوزه تا مخرج در لاروها 0/29-0/21 (0/019 ± 0/24)، در نرها 0/31- 0/22 (0/022± 0/26)، در ماده ها 0/30- 0/23 (0/020±0/24) محاسبه شد.
http://www.aejournal.ir/article_66720_9f56cd2d7bb9a67580e9ad24cc9a505d.pdf
2018-03-21
107
114
ریختشناختی
ریختسنجی
سمندر تاجدار جنوبی
Triturus karelinii
استان مازندران
زینب
اسمعیل زاده سوخته
sheyda101@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران
AUTHOR
حاجی قلی
کمی
hgkami2000@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
علی اکبر
باقریان یزدی
alibagherianyazdi@gmail.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران
AUTHOR
اسمعیل زاده سوخته سرایی، ز.؛ کمی، ح.ق. و باقریان یزدی، ع.، 1395. بررسی صفات مورفولوژیک و مورفومتریک سمندر تاجدار جنوبیTriturus kareliniiدر استان مازندران. اولین کنفرانس یافتههای نوین زیستشناسی. دانشگاه سیستان و بلوچستان. زاهدان. صفحات232 و 233.
1
بزرگی، ف.، 1390. بررسی تغییرات درون جمعیتی سمندر آتشین Salamandra infraimmaculata semenovi در غرب ایران. استان کردستان. پایاننامه کارشناسی ارشد. دانشگاه شهید بهشتی. 129 صفحه.
2
بلوچ ، م.، کمی، ح.ق.، 1373. دوزیستان ایران. انتشارات دانشگاه تهران. چاپ اول. صفحات 88 تا 90.
3
کمی، ح.ق.، 1379. گزارش های جدیدی از پراکنش دوزیستان و خزندگان در ایران. اولین همایش دیرین شناسی و تنوع زیستی. کرمان. انتشارات دایره سبز. صفحات 173 تا 181.
4
Arntzen, J.W., 2003. Triturus cristatus Superspezies KammolchArtenkreis (Triturus cristatus (Laurenti, 1768) Nördlicher Kammolch, Triturus carnifex (Laurenti, 1768) Italienischer Kammolch, Triturus dobrogicus(Kiritzescu, 1903) Donau Kammolch, Triturus karelinii (Strauch, 1870) Südlicher Kammolch). In:Grossenbacher, K. and Thiesmeier, B.(Eds). Handbuch der Reptilien and Amphibien Europas. 4 (IIA): Schwanzlurche (Urodela). AulaVerlag, Wiesbaden. pp: 412-415.
5
Beyhaghi, P., 2016. Geographic distribution of Triturus karelinii. Herpetological review. Vol. 47, No. 4, pp: 621-622.
6
Çıçek, K.; Ayaz, D. and Mutlu, H.S., 2010. Data on morphology of Southern Crested Newt, Trituruskarelinii (Strauch, 1870) (Caudata: Salamandridae) in Uludağ (Bursa, Turkey). Biharrean Biiologist. Vol. 4, No. 2, pp: 103-107.
7
Düşen, S. and Urhan, R., 2008. A new locality of Southern Crested Newt, Triturus karelinii (Strauch, 1870) (Urodela; salamandridae) and eastern spadefoot, Pelobats syriacus (Boettger, 1889) (Anoura; Pelobatidae), from Denizli Province, western Turkey. Russion Journal of Herpetology. Vol. 15, No. 3, pp: 189-192.
8
Kami, H.G., 1997. Rediscovry of the Southern Crested Newt, Triturus (cristatus) karelinii (Salamandridae), from its easternmost locality in Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 15, pp: 5-8.
9
Kuzmin, S.L., 1999. The Amphibians of the Former Soviet Union. Pensoft, Sofia, Moscow. 538 P.
10
Kühnel, K.D., 1983. Herolde des Frühlings: Kammolche. Die Zucht von Triturus cristatus nebst Unterarten. Aquarien Magazin. Vol. 17, pp: 69-73.
11
Jehle, R.; Thiesmeier, B. and Foster, J., 2011. The Crested Newt, a Dwindling PondDweller. Laurenti Verlag, Bielefeld. 152 P.
12
Litvinchuk, S.N. and Borkin, L.J., 2009. Evolution, Systematics and Distribution of Crested Newts (Triturus cristatus Complex) in the Territory of Russia and Adjacent Countries. St. Petersburg: Everopeyskiy dom. 592 P.
13
Olgun, K.; Baran, İ. and Tok, C.V., 2001. Comparative morphology of Triturus kareliniipopulation from western and central Turky (Amphibia: Urodela). Zoology in the Middle East. Vol. 22, pp: 57-65.
14
Olgun, K.; Üzüm, N.; Avci, A. and Miaud, C., 2005. Age, size and growth of the Southern Crested Newt Triturus karelinii (Strauch, 1870) in a population from Bozdağ (Western Turkey). Amphibia Reptilia. Vol. 26, PP: 223-230.
15
Öz, M.; Yavuz, M.; Tunç M.R. and Erdoĝan, A., 2009. A new locality of Southern Crested Newt, Triturus karelinii (Strauch, 1870) (Urodela; salamandridae), from aform Province in Turkey. Russion Journal of Herpetology. Vol. 16, No. 2, pp: 131-133.
16
Rastegar-pouyani, N.; Kami, H.G.; Rajabzadeh, M.; Safiei, S. and Anderson S.C., 2008. Annotated Checklist of Amphibian and Reptiles of Iran. Iranian Journal of Animal Biosystematics. Vol. 4, No. 1, pp: 45-48.
17
Sparreboom, M., 2014. Salamanders of the Old World.Naturalis Biodiversity Center, Leiden, The Netherlands. 430 p.
18
Safaei-Mahroo, B.; Ghaffari, H.; Fahimi, H.; Broomand, S.; Yazdanian, M.; Najafimajd, E.; Hossinian Yousefkhani, S.; Rezazadeh, E.; Hosseinzadeh, M.; Nasrabadi, R.; Rajabizadeh, M.; Mashayekhi, M.; Motesharei, A.; Naderi, A. and Kazemi, M., 2015. The Herpetofauna of Iran: Checklist of Taxonomy, Distribution and Conservation Status. Asian Herpetological Research. Vol. 6, No. 4, pp: 264-265.
19
Terentev, P.V. and Chernov, S.A., 1949. Key to Amphibian and Reptiles (translated from Russian by the Israel program translation, 1965). Moskva: Translated by Kochva, K. 665 P.
20
Thorn, R., 1969. Les salamanders d’Europe, d’Asia, d’Afrique du Nord. Lechevalier, paris, IV. 376 P.
21
Üzüm, N. and Olgun, K., 2009. Ageand growth of the southern crested newt. Triturus karelinii (Strauch 1870), in a lowland population from Northwest Turkey, Acta Zoologica Hungaricae. Vol. 55, pp: 55-56.
22
Vitt, L.J. and Caldwell, J., 2014. An Introductory Biology Amphibian and Reptiles, Herpetology, 4th Edition. 697 P.
23
Wielstra, B.; Litvinchuk, S.N.; Naumov, B.; Tzankov, N. and Arntzen, J.W., 2013. A Revised Taxonomy of Crested Newts in the Triturus karelinii Group (Amphibia: Caudata: Salamandridae), with the Description of a New Species. Zootaxa. Vol. 3682, No. 3, pp: 441-453.
24
Yılmaz, İ., 1983. Trakya Kuyruklu Kurbağaları Üzerine Morfolojik ve Taksonomik Bir Araştırma (Urodela: Salamandridae). Turkish Journal of Zoology. Vol. 7, pp: 119-130.
25
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی فونستیک لاک پشت های استان البرز
لاکپشت ها خزندگانی از راسته Testudines می باشند و به عنوان گونه های کلیدی در زیستگاهی که زندگی می کنند به شمار می روند و وجود آن ها به بقا و پایداری تنوع زیستی کمک می کند. مطالعه حاضر جهت به دست آوردن اطلاعات کافی از تراکم و گونه های لاکپشت در استان البرز جهت بررسی فونستیکی آن ها در استان البرز صورت گرفته است. در پژوهش حاضر از 12 ایستگاه مختلف در استان البرز که از فروردین تا شهریور 1395 تعداد 33 قطعه لاکپشت جمع آوری شد و بعد از زیست سنجی کامل و تشخیص جنسیت، توسط کلیدهای شناسایی معتبر مورد شناسایی قرار گرفتند. از بررسی زیستگاه های مورد بررسی 33 نمونه به دست آمد که 32 مورد آن Testudo graeca بود که گونه غالب استان البرز است و یک مورد آن Emys orbicularisبود. تعداد نمونه ها در ایستگاه ها تفاوت معنی داری نداشتند و به نظر می رسد پراکنش لاک پشتان در نقاط مختلف استان البرز یکسان باشد.
http://www.aejournal.ir/article_64782_23be45bac5192e03430a0e3ff2291632.pdf
2018-03-21
115
122
لاک پشت
استان البرز
فونستیک
Testudines
نعیمه
حسن زاده
na.hassanzadeh1978@gmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم و فناوری های نوین، علوم پزشکی تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
حمید
بلقیس زاده
belgheis_h@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم و فناوری های نوین، علوم پزشکی تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
سیامک
یوسفی سیاه کلرودی
siamak_yousefi1@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
AUTHOR
حجتی، و.؛ مقدس، د. و فقیری، ا.، 1388. شناسایی دوزیستان و خزندگان پارک ملی شهید زارع ساری. فصلنامه علمی پژوهشی زیست شناسی جانوری. سال 1، شماره 3، صفحات 32 تا 38 .
1
حجتی، و.، 1383. بررسی لاک پشت های آبزی استان مازندران و گیلان. پایان نامه کارشناسی ارشد رشته علوم جانوری. دانشگاه شهید بهشتی. 128 صفحه.
2
حجتی، و.؛ کمی، ح.ق.؛ ابراهیمی، م. و شجیعی، ه.، 1381. مقایسه مورفومتریک لاک پشت برکه ای Emys orbicularis و لاک پشت خزری Mauremys caspica caspica در استان های گلستان و مازندران. مجله علوم دریایی ایران. دوره 2، شماره 3، صفحات 1 تا 11.
3
شاکرزاده، ژ.، 1387. مطالعه لاک پشت های خانواده تستودینیده و امیدیده در نواحی غربی و جنوبی ایران. پایان نامه کارشناسی ارشد رشته زیست شناسی. دانشگاه رازی کرمانشاه. 97 صفحه.
4
عظیمی، م.، 1394. بررسی فونستیک لاکپشتان شهرستان دماوند. پایان نامه کارشناسی ارشد بیوسیستماتیک جانوری. دانشگاه آزاد اسلامی واحد پزشکی تهران. 78 صفحه.
5
کمالی، ک.، 1392. کتاب خزندگان و دوزیستان ایران. انتشارات ایران شناسی. 366 صفحه.
6
لاریجانی، م.، 1394. بررسی فونستیک لاک پشتان شهرستان های جنوب شرق استان تهران. پایان نامه کارشناسی ارشد رشته بیوسیستماتیک جانوری. دانشگاه آزاد اسلامی واحد ورامین-پیشوا. 81 صفحه.
7
Arnold, E., 1988. Caudal autotomy as a defense. Biology of the Reptilia. Vol. 6, pp: 235-273.
8
Anderson, S., 1974. Preliminary key to the turtles lizard and Amphisbaenias of Iran. Fieldiana Zoology. Vol. 4, No. 4, PP: 27-43.
9
Atatür, M. and Ballasina, D., 1995. A preliminary report on the present status of Turkey’s terrestrial and freshwater turtles from the viewpoint of conservation. Red Data Book on Mediterranean Chelonians. pp: 183-190.
10
Fulton, D.C.; Manfredo, M.J. and Lipscomb, J., 1996. Wildlife value orientations: A conceptual and measurement approach. Human dimensions of wildlife. Vol. 1, No. 2,pp: 24-47.
11
Group, T.T.W., 2009. Turtles of the world: annotated checklist of taxonomy and synonymy, 2009 update, with conservation status summary. Chelonian Research Monographs. Vol. 5, pp: 39-84.
12
Li, C.; Wu, X.C.; Rieppel, O.; Wang, L.T. and Zhao, L.J., 2008. An ancestral turtle from the Late Triassic ofsouthwestern China. Nature. Vol. 456, No. 7221, pp: 497-501.
13
Mohan, G.H. and Norton, T., 2010. Turtles, tortoises, and terrapins. Behavior of exotic pets. Ames (IA): WileyBlackwell. pp: 33-43.
14
Roe, D.; Leader Williams, N. and Dalal Clayton,D.B., 1997. Take only photographs, leave only footprints: the environmental impacts of wildlife tourism. Environmental Planning Group International Institute for Environment and Development.London. 86 p.
15
Zuffi, M.; Celani,A.; Foschi, E. and Tripepi, S., 2007. Reproductive strategies and body shape in the European pond turtle (Emys orbicularis) from contrasting habitats in Italy. Journal of Zoology. Vol. 271, No. 2, pp: 218-224.
16
Zuffi, M.A.; Di Benedetto, M.F. and Foschi, E., 2004. The reproductive strategies in neighbouring populations of the European pond turtle, Emys orbicularis, in central Italy. Italian Journal of Zoology. Vol. 71, No. 2, pp: 101-104.
17
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه صفات ریخت شناختی ( Teratoscincus bedriagai Nikolsky,1899, (Sauria : Sphaerodactylidae در شمال استان سیستان و بلوچستان
گونه Teratoscincus bedriagai (گکوی دم پخ بدریاگا = گکوی سقنقر بدریاگا) در گذشته جزء خانواده Gekkonidae بوده و طبق مطالعات اخیر از این خانواده جدا شده و به خانواده Sphaerodactylidae منتقل شده است. نمونه برداری از این گونه به منظور مطالعه صفات ریخت شناسی در سال های 1393 و 1394 با توجه به شب فعال بودن این گونه، از بیابان های سیستان (شمال استان سیستان و بلوچستان) در طی شب انجام گرفت. در این نمونه برداری 18 نمونه جمع آوری گردید، سپس نمونه ها جهت بررسی و شناسائی دقیق تر به آزمایشگاه دانشکده علوم زیستی دانشگاه شهید بهشتی تهران و دانشگاه گلستان گرگان منتقل شد. نمونه ها براساس کلید شناسائی Anderson شناسائی شدند. سپس صفات ریختی، متریک و مریستیک آن ها مورد بررسی قرار گرفت. این مطالعه برروی 12 فرد نر و 6 فرد ماده انجام گرفت، نتایج نشان داد که طول نوک پوزه تا لبه قدامی شکاف کلواک نرها 64/3–52/8 میلی متر و ماده ها 64/3–52/1 میلی متر، تعداد فلس های عرض سر 35–28، فلس های طول سر 76–61، تعداد فلس های لب بالا 12–9 و لب پائین 11–8، فلس های دور قسمت میانی بدن کم تر از 60، صفحات روی دم 11–8 است. این گونه فاقد فلس های پس چانه ای است.
http://www.aejournal.ir/article_64821_0639bebdb9dedcb2c5ece03cfc71a4c1.pdf
2018-03-21
123
128
گکوی بدریاگا
سوسمار
مورفومتریک
مریستیک
سیستان
علیرضا
ریکی
alireza1984.r@gmail.com
1
گروه زیست شناسی و زیست فناوری دریا و آبزیان، دانشکده علوم و فناوری های زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران، صندوق پستی: 1983969411
LEAD_AUTHOR
حاجی قلی
کمی
hgkami2000@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، کد پستی: 155
AUTHOR
فراهم
احمدزاده
f.ahmadzadeh61@gmail.com
3
گروه تنوع زیستی و مدیریت اکوسیستم ها، پژوهکشده علوم محیطی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران، صندوق پستی : 1983969411
AUTHOR
بهرام
حسن زاده کیابی
b.h.kiabi@gmail.com
4
گروه زیست شناسی و زیست فناوری دریا و آبزیان، دانشکده علوم و فناوری های زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران، صندوق پستی: 1983969411
AUTHOR
ابراهیمی، م.، 1388. تحولات سیاسی و اجتماعی سیستان و بلوچستان،1320 تا 1332 شمسی. نوبت چاپ 1. انتشارات بخارا. تهران. صفحه 29.
1
استواری، ح.، ۱۳۹۰. مطالعه مقدماتی اکولوژیک مارمولکهای شهرستان فردوس. محیط زیست جانوری. سال ۳، شماره ۲، صفحات ۱ تا ۸.
2
پیری، ا. و انصاری، ح.، 1392. بررسی خشک سالی دشت سیستان و تاثیر آن بر تالاب بین المللی هامون. تالاب. سال 4، شماره 15، صفحات 63 تا 74.
3
حجتی، و.؛ کمی، ح.ق. و فقیری، ا.، ۱۳۸۸. مطالعه مورفولوژی سوسمار Teratoscincus bedriagaiدر استان سمنان. زیستشناسی جانوری. سال۲، شماره ۱، صفحات ۲۷ تا ۳۱.
4
دفتر آمار و اطلاعات. 1392. سالنامه آماری استان سیستان و بلوچستان. معاونت برنامه ریزی و اشتغال استانداری سیستان و بلوچستان. صفحات 3 تا 90.
5
رستگارپویانی، ن.؛ جوهری، م. و رستگارپویانی، ا.، 1386. راهنمای صحرایی خزندگان ایران. جلد اول. چاپ دوم. انتشارات دانشگاه رازی. کرمانشاه. 268 صفحه.
6
شامحمدی، ز. و ملکی، س.، ۱۳۹۰. حیات هامون. چاپ اول. انتشارات جهاد دانشگاهی. تهران. 344صفحه.
7
کمی، ح ق. و نظرخانی، ل.، 1395. اولین گزارش گکوی سقنقر معمولی (Teratoscincus scincus scincus) از شمال شرقی ایران در گلستان. محیط زیست جانوری. سال 8، شماره 3، صفحات 45 تا 52.
8
کیانی، ا.؛ سالاری سردر، ف.؛ بیرانوندزاده، م. و بستانی، ع.، 1391. تحلیلی بر ساختار فضایی و توسعه افقی شهرهای منطقه سیستان. برنامه ریزی شهری. سال 3، شماره 8، صفحات 80 تا 81.
9
مهندسین مشاور سبزآوران هیرمند.۱۳۹۰. مطالعات مکان یابی مجتمع کشاورزی در دشت سیستان. وزارت نیرو، شرکت توسعه منابع آب و خاک سیستان. صفحات ۱ تا ۵۰.
10
یوسفی، م.؛ خانی، ع.؛ شیخی پیلانلو، ص. و رستگارپویانی، ا.، 1392. فون سوسماران شهرستان سبزوار با تاکید بر گونه های هم زیستگاه به همراه ارائه چارچوبی برای تهیه نقشه های پراکنش خزندگان ایران. تاکسونومی و بیوسیستماتیک. سال 5، شماره 3، صفحات 1 تا 16.
11
Anderson, S.C., 1999. The lizards of Iran society for the study of Amphibians and Repitles, Oxford, ohio. 442 p.
12
Gamble, T.; Bauer, A.M.; Greenbaum, E. and Jackman, T.R., 2008. Evidence for Gondwanan vicariance in an ancient clade of gecko lizards. J of Biogeograph. Vol.35, pp: 88-104.
13
Hojati, V.; Mojibi, F. and Jahed Haghshenas, N., 2014. A preliminary study on the biology of the bedriaga's plate tailed gecko, Teratoscincus bedriagai in Iran. Journal of Entomology and Zoology Studies. Vol. 4, No. 4, pp: 14-17.
14
Jahed-Haghshenas, N. and Hojati, V., 2015. The Male Reproductive Cycle of the Bedriaga′s Plate-Tailed Gecko, Teratoscincus bedriagai in Iran. Iranian Journal of Animal Biosystematics. Vol. 11, No. 1, pp: 7-16.
15
Lee Lerner, K. and Wilmoth Lerner, B., 2004. The galeencyclopedia of science. Third edition. Vol. 1, 6661 P.
16
Smid, J.; Moravec, J.; Kodym, P.; Kratochvil, L.; Hosseinian Yousefkhani, S.; Rastegar-Pouyani, E. and Frynta, D., 2014. Annotated checklist and distribution of the lizards of Iran. Zootaxa.Vol. 3855, No. 1, pp: 1-97.
17
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه فون سوسمارهای پارک ملی خجیر در استان تهران
خزندگان به دلیل تغذیه از حشراتی که به عنوان آفات گیاهی شناخته می شوند، در حفظ محصولات کشاورزی اهمیت ویژه ای دارند. منطقه خجیر باتوجه به اقلیم های متفاوت و در عین حال تحت حفاظت بودن منطقه نماینده خوبی جهت بررسی میدانی می باشد. هدف از مطالعه حاضر ارزیابی فون و زیست سنجی سوسمارهای پارک ملی خجیر استان تهران می باشد که از اسفند 1394 تا مرداد 1395 به روش پیمایشی در ایستگاه های تعیین شده نمونه گیری انجام شد. درمجموع 58 نمونه سوسمار از منطقه جمع آوری شدند، تمام اطلاعات مربوط به نمونه ها ثبت شد و از آن ها عکس تهیه گردید. تمام نمونه ها پس از شناسایی رها شدند. بر روی نمونه ها مطالعات ریخت شناسی و بررسی صفات شمارشی و زیست سنجی انجام گرفت و سپس براساس کلیدهای شناسایی معتبر شناسایی شدند. از 58 نمونه جمع آوری شده 5 گونه شناسایی شده متعلق به 5 جنس و 3 خانواده هستند که عبارتند از: Eumeces schneideri و Trachylepis aurata از خانواده Scincidae، Cyrtopodion scabrum از خانواده Gekkonidae، Paralaudakia caucasia و Trapelus agilis از خانواده Agamidae.
http://www.aejournal.ir/article_64840_d2428e3404802d6f3b823828c1542d7a.pdf
2018-03-21
129
136
فون
سوسمار
پارک ملی
خجیر
استان تهران
زینب سادات
مرتضوی مقدم
zeinabmortazavy@yahoo.com
1
واحد علوم پزشکی تهران، دانشگاه آزاداسلامی ، تهران، ایران
AUTHOR
بتول
قربانی یکتا
yekta@iautmu.ac.ir
2
واحد علوم پزشکی تهران، دانشگاه آزاداسلامی ، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
ابراهیمی پور، ف.؛ رستگارپویانی، ا. و قربانی یکتا، ب.، 1394. مطالعه فونستیک سوسماران مناطق شمال غربی استان یزد. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد پزشکی تهران. 103 صفحه.
1
احمدزاده، ف.؛ عبدلی، ا.؛ مصطفوی، ح.؛ ابراهیمی، م. و محرابیان، ا.ر.، 1385. مطالعه تنوع زیستی سوسمارهای استان قم. مجله محیط شناسی. دوره 34، شماره 4، صفحات 119 تا 128.
2
اریس، س.؛ پریور، ک.؛ رستگارپویانی، ن. و بهارآرا، ج.، 1388. شناسایی و معرفی مارمولک های خزانق و ندوشن استان یزد. مجله زیست شناسی دانشگاه آزاد اسلامی واحدگرمسار. دوره 4، شماره3، صفحات 1 تا 18.
3
پارسا، ح.؛ رستگارپویانی، ن.ا.؛ ساری، ع.ر. و غفاری، م.، 1383. مطالعه بیوسیستماتیک سوسمارهای استان کهگیلویه و بویر احمد. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه تهران. 158صفحه.
4
پروانه اول، ا.؛ دهقانی تفتی، م. و حسن زاده کیابی، ب.، 1387. بررسی رابطه غنا، تنوع،یکنواختی و فراوانی گونه ای سوسماران با وضعیت توپوگرافی در منطقه سبزوار. مجله زیست شناسی ایران. جلد 22، شماره 3، صفحات 11 تا 24.
5
توماسار، ر.، 1982. زیست شناسی مهره داران. ترجمه ابراهیم نژاد، م.، 1385. چاپ دوم، مرکز نشر دانشگاهی، تهران. 823 صفحه.
6
حجتی، و.؛ فقیری، ا. و بابایی، ر.، 1390. بررسی فون دوزیستان و خزندگان پارک ملی کیاسر در استان مازندران، فصلنامه زیست شناسی جانوری. دوره 4، شماره 2، صفحات 33 تا 44.
7
حجتی، و.؛ کمی، ح. و فقیری، ا.، 1385. بررسی فونستیک سوسمارها در منطقه دامغان. مجله زیست شناسی ایران. جلد 19، شماره 3، صفحات 325 تا 340.
8
حجتی، و.؛ مقدس، د. و فقیری، ا.، 1388. شناسایی دوزیستان و خزندگان پارک ملی شهید زارع ساری. فصلنامه زیست شناسی جانوری. سال 1، شماره 3، صفحات 31 تا 36.
9
حسن زاده کیابی، ب.، 1390. جانورشناسی(2). مرکز چاپ وانتشارات دانشگاه پیام نور. چاپ نهم. 186صفحه.
10
خادمی، ع.؛ حسن زاده کیابی، ب.؛ کمی، ح.ق. و شیدایی، م.، 1384. بیوسیستماتیک مارمول کهای منطقه نیشابور. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه شهید بهشتی. 132صفحه.
11
داداشی، ع.؛ کمی، ح.ق. و شجیعی، ه.، 1388. اولین گزارش از گکوی سنگی تیغه دار scabrum Cyrptopodion(خزندگان: سوسماران: گکونیده) در استان آذربایجان شرقی. فصلنامه زیست شناسی جانوری. سال 2، شماره 1، صفحات 33 تا 38.
12
درویش صفت، ع.ا.، 1385. اطلس مناطق حفاظت شده ایران. انتشارات دانشگاه تهران. چاپ اول. 160 صفحه.
13
رستگارپویانی، ن.ا.، 1381. مطالعه مقدماتی فون سوسمار استان کرمانشاه، غرب ایران. اولین کنفرانس علوم و تنوع زیستی جانوری ایران.
14
رستگارپویانی، ن.ا .؛ جوهری، م. و رستگارپویانی، ا.، 1386. راهنمای صحرایی خزندگان ایران. انتشارات دانشگاه رازی، کرمانشاه. 268 صفحه.
15
زارعیان، ح.؛ اسماعیلی، ح.ر.؛ غلامحسینی، ع.؛ تیموری، آ.؛ ظهرابی، ح. و کمی، ح.ق.، 1387. بررسی مقدماتی فون خزندگان منطقه شکار ممنوع کوه گرم جهرم در استان فارس. مجله تاکسونومی و بیوسیستماتیک. سال 1، شماره 1، صفحات 1 تا 8.
16
شفیعی، س.؛ حسن زاده کیابی، ب.؛ زهزاد، ب. و کمی، ح.ق.، 1377. مطالعه مقدماتی اکولوژیکی توزیع و پراکنش گونه های مختلف مارمولک پناهگاه حیاط وحش خبروروچون و دشت سیرجان در استان کرمان. پایاننامه کارشناسیارشد دانشگاه شهید بهشتی. 367 صفحه.
17
عقیلی، ح.؛ حسن زاده کیابی، ب. و کمی، ح.ق.، 1386. بررسی فونستیک مارمولک های منطقه فریمان در استان خراسان رضوی. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه شهید بهشتی. 75 صفحه.
18
فرجی راد، ع. و سیدنصیری، ژ.، 1388. جغرافیای گردشگری تهران و نقش شهرسازی و معماری در توسعه آن. فصلنامه جغرافیای انسانی. سال 2، شماره 1، صفحات 71 تا 84.
19
فکوری، ص.؛ جمالزاده، ح.م. و اسدیان نارنجی، س.، 1391. بررسی بیوسیستماتیکی خزندگان و دوزیستان منطقه حفاظت شده تالاب بین المللی امیرکلایه، ایران. پایاننامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد تنکابن. 129صفحه.
20
کلاته، م.؛ جمالزاده، ح.م. و نواییان، م.، 1393. بررسی زیستی و بیوسیستماتیکی گربه سانان پارک ملی خجیر و سرخه حصار. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد تنکابن. 68صفحه.
21
کمالی، ک.، 1392. خزندگان و دوزیستان ایران. انتشارات ایران شناسی. 368 صفحه.
22
مسئولی، ف.؛ کمی، ح.ق. و شجیعی، ه.، 1392. مطالعه فون سوسمارهای شهرستان طبس در استان یزد. فصلنامه زیست شناسی جانوری. سال 4، شماره 4، صفحات 83 تا 90.
23
نصرآبادی، ر.؛ درویش، ج.؛ رستگارپویانی، ن. و اجتهادی، ح.، 1386. بررسی فون سوسماران بخش صالح آباد تربتجام استان خراسان رضوی. مجله زیست شناسی ایران. جلد 21، شماره 2، صفحات 361 تا 368.
24
یزدان پناهی، م.؛ حسن زاده کیابی، ب.؛ زهزاد، ب. و کمی، ح.ق.، 1379. بررسی تنوع فون مارمولک های شاهرود. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه شهید بهشتی. 246 صفحه.
25
یوسفی، م.؛ شیخی ئیلانلو، ص.؛ خانی، ع.؛ کفاش، ا. و رستگارپویانی، ا.، 1393. بررسی فون خزندگان منطقه حفاظت شده جنگل خواجه و بررسی میزان تشابه آن با مناطق فیریوجئوگرافیک سوسماران ایران. مجله تاکسونومی و بیوسیستماتیک. سال 7، شماره 22، صفحات 13 تا 22.
26
Ahmadzadeh, F.; Abdoli, A.; Mostafavi, H.; Ebrahimi, M. and Mehrabian, A.R., 2008. Biodiversity study Lizards Qom province. Journal of Environmental Studies. Vol. 34 , No. 46, pp: 119-128.
27
Fathnia, B.; Rastegar Pouyani, N.; Sampour, M.; Bahrami, A. and Jaafari, G., 2010. The lizard fauna of Ilam province, Southwestern Iran. Iranian Journal of Animal Biosystematics (IJAB). Vol. 5, No. 2, pp: 65-73.
28
Rastegar Pouyani, N. and Rastegar Pouyani, E., 2006. A new form of Eremias (Sauria: Lacertidae) from the Alvand Mountains, Hamedan Province, western Iran. Iranian Journal of Animal Biosystematics. Vol. 1 , No. 1, pp: 14-20.
29
Nilson, G. and C. Andrén., 1978. A new species of Ophiomorus (Sauria: Scincidae) from Kavir Desert, Iran. American Society of Ichthyologists and Herpetologists (ASIH). Vol. 1987 , No. 4, pp: 559-564.
30
Mertens, R.F.W., 1956. Amphibiens und reptilian aus S.O. Iran. Jahreshefte des vereins fur vaterlandische Naturkunde in wurtberg. Vol. 111 , No. 1, pp: 90-97.
31
Petrov, B., 2004. The herpetofauna (Amphibia and Reptilia) of the eastern Rhodopes (Bulgaria and Greece). Biodiversity of Bulgaria. Vol. 2 , pp: 863-879.
32
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی برخی خصوصیات زیستی ماهی خیاطه ( 1863 ,Alburnoides eichwaldii (De Filippii در رودخانه گوگگل از حوضه گرگانرود
این مطالعه با هدف بررسی برخی پارامترهای زیستی ماهی خیاطه (Alburnoides eichwaldii) در رودخانه گوگگل از حوضه گرگانرود از اسفند 1393 تا شهریور 1394 به صورت ماهانه انجام و 191 نمونه مورد زیست سنجی قرار گرفت. بزرگ ترین نمونه در جنس نر به ترتیب دارای طول و وزن 9/3 سانتی متر و 10/115 گرم و درجنس ماده 10/2 سانتی متر و 15/974 گرم بود. میانگین و انحراف معیار طول و وزن به ترتیب 1/25±6/22 و 2/63±3/38 بود. نسبت جنسی نر و ماده اختلاف معنی داری نداشت. بنابراین نسبت جنسی را می توان 1:1 در نظر گرفت. الگوی رشد از نوع آلومتریک مثبت به دست آمد (نر: 3/1277TL0/0093=W، ماده: 3/1527TL0/0093=W، جمعیت:3/1781TL0/0087=W). در جمعیت مورد مطالعه 3 گروه سنی +2 تا +4 ساله مشاهده گردید. در هر دوجنس نر و ماده بالاترین ضریب رشد لحظه ای در سنین (+1 به +2) مشاهده شد. معادله وان برتلانفی برای جمعیت ماده ( Lt= 12/28(1- e -0/304(t+0/154) و برای جنس نر( Lt=10/11(1-e-0/251(t+0/512) محاسبه گردید.
http://www.aejournal.ir/article_66732_d9a1c1141019394176987d3faf615c50.pdf
2018-03-21
137
144
ماهی خیاطه
الگوی رشد
طول- وزن
برتالانفی
رودخانه گوگگل
گرگانرود
آلتین
قجقی
altin.ghojoghi@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
LEAD_AUTHOR
رحمان
پاتیمار
rpatimar@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
AUTHOR
کیاوش
گلزاریان پور
kiavash.pro@gmail.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
AUTHOR
ارسلان
بهلکه
arsalan.bahalkeh@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
AUTHOR
احمدی، س.ا.؛ وثوقی، ع.؛ وطن دوست، ص.؛ قلیچی، ا. و صیدانلو، ز.،1390. برخی خصوصیات ساختار جمعیت ماهی خیاطه (Alburnoides bipunctatus (Bloch,1782 در سرشاخه های اصلی رودخانه تالار استان مازندران. مجله شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد آزادشهر. سال 5، شماره2، صفحات 65 تا 80.
1
پاتیمار، ر. و دولتی، ف.، 1386. بررسی سن، رشد و تولیدمثل گونه خیاطه (Alburnoides bipunctatus) در رودخانه زرین گل (البرز شرقی). مجله شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد آزادشهر. سال 1، شماره 2، صفحات 39 تا 46.
2
خزایی موغانی، س.؛ نجفی نژاد، ع.، عظیم محسنی، م. و شیخ، و.ب.، 1392. تغییرات مکانی و فصلی رسوب معلق در ایستگاه های واقع در طول رودخانه گرگانرود، استان گلستان. پژوهشنامه مدیریت حوزه آبخیز. سال4، شماره 7، صفحات 1 تا 15.
3
عباسی، ف.؛ قربانی، ر.؛ یلقی، س.؛ حاجی مرادلو، ا. و فاضل، ع.، 1392. مطالعة برخی خصوصیات زیستی ماهی خیاطه (Alburnoides eichwaldii) در نهر تیل آباد، استان گلستان. نشریه شیلات مجله منابع طبیعی ایران. دوره 66، شماره1، صفحات 59 تا 70.
4
عبدلی، ا.، 1378 . ماهیان آب های داخلی ایران. موزه طبیعت حیات وحش ایران. تهران 378 صفحه.
5
عبدلی، ا. و نادری، م.، 1387 . تنوع زیستی ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر. انتشارات علمی آبزیان. 242 صفحه.
6
منجمی، م.؛ قربانی، ر.؛ وثاقی، م.ج. و نوروزرجبی، ع.ر.، 1392. ساختار سنی، رشد و ضریب مرگ و میر ماهی خیاطه (Alburnoides eichwaldii De Filippii, 1863 ) در رودخانه شیرود، استان مازندران. فصلنامه علوم و فنون شیلات. دوره2، شماره4، صفحات 57 تا 67.
7
نادری، م. و عبدلی،1.، 1383. اطلس ماهیان حوزه جنوبی دریای خزر (آب های ایران). موسسه تحقیقات شیلات ایران. 112 صفحه.
8
وثوقی،غ.ح. و مستجیر، ب.، 1379. ماهیان آب شیرین. انتشارات دانشگاه تهران. 317 صفحه.
9
Begenal, T.B. and Tesch, F.W., 1978. Age and growth. In: Bagenal, T.B. (ed.), Methods for assessment of fish production in freshwater, third edition. Blackwell Scientific Publication, London. pp: 101-136.
10
Berg, L.S., 1949. Freshwater Fishes of Iran and Adjacent Countries. Trudy Zoologiches Cogo Instituta Akademiinauk, USSR. Vol. 8, pp: 753-858.
11
Beverton, R.J.H. and Holt, S.J., 1957. On the dynamics of exploited fish populations. Fisheries Inv. Series ш. Vol. 19. H.M.S.O. London. 575 p.
12
Biswas, S.P., 1993. Manual off methods in fish biology. South Asian Publisher, NewDelhi. pp. 56-62.
13
Cicek, E.; Sigirci, U.; Birecikligil, S. and Saylar, O., 2016. Age, growth and mortality of Caspian Spirlin, Alburnoides eichwaldii (De Filippi, 1863), from Aras River Basin in Turkey. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 15, No. 3, pp: 1237-1245.
14
Kazancheev, E.N., 1981. Ryby Kaspiiskogo Morya [Fishes of the Caspian Sea]. Legkaya i Pischchevaya Promyshlennost, Moskva. 167 p.
15
Ladiges, W. and Vogt, D., 1979. Die Susswasserfische Europas. Paul Parey, Hamburg and Berlin. 299 p.
16
Moutopoulos, D.K. and Stergiou, K.I., 2002. Length weight and length-length relationships of fish species from Aegean Sea (Greece). Journal of Applied Ichthyology. Vol. 18, pp: 200-203.
17
Papargeorgiou, N.K., 1979. The length weight relationship, age, growth and reproduction of the roach in lake Volvi. Journal of fish biology. Vol. 14, pp: 529-538.
18
Patimar, R.; Zare, M. and Hesam, M., 2012. On the life history of spirlin Alburnoides bipunctatus (Bloch, 1782) in the qanat of Uzineh, northern Iran. Turkish Journal of Zoology. Vol. 36, No. 3, pp: 383-393.
19
Pauly, D. and Munro, J.I., 1984. Once more on the comparison of growth in fish and invertebrates, ICLARM. Fishbyte. 106 p.
20
Ricker, W.E., 1979. Methods of estimating and interpreting biological indicators of fish population. Translate from English. Moscow, Pishch, Prom st.
21
Sari, H.M.; Ilhan, A. and Yurdakul, E., 2012. The length weight relationship of spirlin, Alburnoides bipunctatus (Bloch, 1782) in freshwaters of Turkey. Ege J Fish Aqua Sci. Vol. 29, No. 3, pp: 143-145.
22
Seifali, M.; Arshad, A.; Amin, S.N.; Kiabi, B.H.; Esmaeili, H.R. and Yazdani Moghaddam, F., 2012. Population dynamics of Caspian spirlin (Actinopterygii: Cyprinidae) in the Kesselian Stream, Iran. African Journal of Biotechnology. Vol. 11, pp: 9214-9222.
23
Skora, S., 1972. The cyprinid Alburnus bipunctatus Bloch from the basins of the rivers Upper San and Dunajec. Journal of Acta Hydrobiologica Sinica. Vol. 14, pp: 173-204.
24
Tabatabaei, S.N.; Hashemzadeh Segherloo, I.; Abdoli, A.; Milani, M. and Mirzaei, R., 2014. Age and growth of spirlins, Alburnoides eichwaldii and A. namaki, from the Caspian, Kavir and Namak basins of Iran. Iranian Journal of Ichthyolgy. Vol. 1, No. 4, pp: 266-273.
25
Treer, T.; Piria, M.; Ancic, I.; Safner, R. and Tamljanovic, T., 2006. Diet and growth of spirlin (Alburnoides bipunctatus) in the barbel zone of the Sava River. Folia Zoologica. Vol. 55, pp: 97-106.
26
Wootton, R.J., 1990. Ecology of Teleost fishes, Chapman and Hall Ltd. 404 p.
27
Yildirim, A.; Erdoğan, O.; Turkmen, M. and Demir, B.C., 1998. The investigation of some reproduction characteristics of the Alburnoides bipunctatus faciatis (Nordman, 1840) living in Oltu stream, Coruh basin. Turkish. Journal of Zoology. Vol. 25, pp: 163-168.
28
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه جمعیتهای سیاهماهی (Capoeta barriosi Lortet, 1894) رودخانههای قمرود، کر و شلدون براساس صفات شمارشی و ریختسنجی هندسی
این پژوهش به منظور بررسی تفاوتهای ریختسنجی هندسی و مقایسه صفات شمارشی با هدف درک الگوی تفاوتهای بالقوه بین جمعیتهای سیاهماهی سه رودخانه کر ، قمرود و شلدون در حوضه آبریز نمک انجام شد. برای این منظور تعداد ٩٠ قطعه سیاهماهی Capoeta barroisi شامل ٣٦ قطعه از رودخانه کر (با میانگین ظول کل و انحراف معیار 7/79±36/41) و ١١ قطعه از رودخانه قمرود (2/40±36/28) و 43 قطعه از رودخانه شلدون (29/34±69/10) صید شدند. نمونهها پس از بی هوشی در محلول ۱٪ گل میخک و تثبیت در فرمالین ۱۰٪، برای مطالعات بعدی، به موزه ماهیشناسی، منتقل و در الکل ۷۰٪ نگه داری شدند. پس از ثبت صفات شمارشی، از نیم رخ چپ ماهیان عکسبرداری به عمل آمد و تعداد ۱۵ لندمارک بر روی تصاویر دو بعدی انتخاب و رقومیسازی شدند. صفات شمارشی و دادههای شکلی حاصله پس از آنالیز پروکراست )روی هم گذاری(، با استفاده از روشهای آماری چند متغیره PCA و CVA مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفتند. نتایج تجزیه به مؤلفههای اصلی و کلیه نتایج تحلیل همبستگی کانونی صفات شمارشی و روش ریختسنجی هندسی نشان داد که جمعیتها با یکدیگر اختلاف معنیداری دارند (0/05>P) و دو جمعیت شلدون و قمرود در یک گروه و جمعیت رودخانه کر در یک خوشه جداگانهای قرار گرفتند.
http://www.aejournal.ir/article_66749_5b02c62cf4bf4332667c53442ab7e49c.pdf
2018-03-21
145
152
ریختسنجی هندسی
زیستسنجی
ویژگیهای شمارشی
کپورماهیان
محمود
بنی مسنی
mahmood.bani@na.iut.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
یزدان
کیوانی
keivany@iut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
LEAD_AUTHOR
عیسی
ابراهیمی
e_ebrahimi@iut.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
Asadollah, S.; Soofiani, N.M.; Keivany Y. and Shadkhast, M., 2011. Reproduction of Capoeta damascina, a cyprinid fish, in Zayandeh-Rud River, central Iran. J. Appl. Ichthyol. Vol. 27, pp: 1061-1066.
1
Asadollah, S.; Soofiani, N.M.; Keivany, Y. and Hatami, R., 2017. Age and Growth of the Mesopotamian Barb, Capoeta damascina, in Central Iran. Iran. J. Fish. Sci., In press.
2
Bookstein, F.L., 1998. Morphometric tools for landmark data: geometry and biology. Cambridge University
3
Press. 435 p.
4
Cadrin, S.X., 2000. Advances in morphometric identification of fishery stocks. Rev. Fish Biol. Fish. Vol. 10, No. 1, pp: 91-112.
5
Costa, C. and Cataudella, S., 2007. Relationship between shape and trophic ecology of selected species of Sparids of the Caprolace coastal lagoon (Central Tyrrhenian Sea). Env. Biol. Fish. Vol. 78, No. 2, pp: 115-123.
6
Coad, B., 2017. Freshwater fishes of Iran. www.briancoad.com. last Accessed on 20 March 2017).
7
Guill, J.M.; Hood, C.S. and Heins, D.C., 2003. Body shape variation within & among three species of darters (Perciformes: Percidae). Ecology of Freshwater Fish. Vol. 12, No. 2, pp: 134-140.
8
Helfman, G.; Collette, B.B.; Facey, D.E. and Bowen, B.W., 2009. The Diversity of fishes. 2nd edition. Wiley-Blackwell. 736 p.
9
Jalili, P.; Eagderi, S. and Keivany, Y., . 2015Body shape comparison of Kura bleak (Alburnus filippii) in Aras and Ahar-Chai rivers using geometric morphometric approach. Research in Zoology, Vol. 5, No. 1, pp: 20-24.
10
Keivany, Y.; Nasri, M.; Abbasi, K. and Abdoli, A.; 2016. Atlas of inland water fishes of Iran. Iran Department of Environment Press. 218 p.
11
Pinheiro, A.; Teixeira, C.M.; Rego, A.; Marques, J.F. and Cabral, H.N., 2005. Genetic & morphological variation of Solea lascaris (Risso, 1890) along the portugese coast. Fish. Res. Vol. 23, No. 3, pp: 67-78.
12
Poulet, N.; Berrebi, P.; Crivelli, A.J.; Lek, S. and Argillier, C., 2004. Genetic and morphometric variations in the pikeperch (Sander lucioperca) of a fragmented delta. Arch. Hydrobiol. Vol. 159, No. 4, pp: 531-554.
13
Razavipour, P.; Eagderi, S.; Poorbagher, H.; Javanshir Khooi, A. and Keivan, Y., 2015. Phenotypic plasticity of the Tuini fish, Capoeta damascina, (Actinopterygii: Cyprinidae) populations in Iranian part of Tigris basin using geometric morphometric approach. J. Anim. Res. Vol. 28, pp: 170-179.
14
Siami, M.; Keivany, Y. and Farhadian, O., 2017a. Reproductive characteristics of Siahmahi, Capoeta damascina (family Cyprinidae), in Beheshtabad River, Tigris basin. Sri Lanka J. Aquat. Sci. Vol. 22, No. 1, pp: 21-27.
15
Siami, M.; Keivany, Y. and Farhadian, O., 2017b. On some growth characteristics of Siahmahi (Capoeta damascina), in Beheshtabad River of Chaharmahal and Bakhtiari. Submitted.
16
Smith, G.R., 1966. Distribution and evolution of the North American catostomid fishes of the subgenus Pantosteus, genus Castostomus. Miscellaneous Publications, Museum of Zoology, University of Michigan. 129 p.
17
Swain, D.P. and Holtby, L.B., 1989. Differences in morphology and behavior between juvenile coho salmon Oncorhynchus kisutch rearing in a lake and in its tributary stream. Can. J. Fish. Aquat. Sci. Vol. 46, No. 8,
18
pp: 1406-1414.
19
Tudela, S., 1999. Morphological variability in a Mediterranean, genetically homogeneous population of the European anchovy. Engraulis encrasicolus. Fish. Res.
20
Vol. 42, No. 3, pp: 229-243.
21
Turan, C., 2000. Otolith shape and meristic analysis of herring (Clupea harengus) in the North-East Atlantic. Arch. Fish. Mar. Res. Vol. 48, No. 3, pp: 213-225.
22
Wootton, R.J., 1999. Ecology of Teleost Fishes. 2nd edition. Springer, London. 392 p.
23
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی رابطه طول و وزن و تولید مثل ماهی گیش پوزه دراز ( Carangoides chrysophrys(Cuvier, 1833 در آب های استان هرمزگان
بررسی رابطه طول و وزن و تولیدمثل ماهی گیش پوزه دراز (Carangoides chrysophrys) در آب های استان هرمزگان از اسفندماه 1392 تا بهمن ماه سال 1393 انجام شد. نمونهها ماهانه و در 14 ایستگاه با استفاده از تور ترال صید و جمعآوری گردید. در این تحقیق، کل نمونه های مورد بررسی 376 عدد بود که از این تعداد 194 عدد ماده و 137 عدد نر و 45 عدد نابالغ بودند. کمینه و بیشینه طول کل ماهی در طی ماه های مختلف بین 25/5 تا 80 سانتی متر بوده است. رابطه طول کل و وزن 901/2 y = 0/0162 x به دست آمد که نشان داد ماهی مذکور از یک رشد همگون (ایزومتریک) برخوردار بود. طول بلوغ (LM50) برای ماهی گیش پوزه دراز بهترتیب 46 سانتی متر برآورد گردید. نسبت جنسی ماده به نر برای ماهی گیش پوزه دراز برابر با 1/42 به 1 بود که اختلاف معنی دار را نشان داد (0/05>P). بیشینه همآوری مطلق 479992 تخمک در فروردین ماه و بیشینه همآوری نسبی 385 تخمک به ازای هر گرم از وزن بدن در تیرماه به دست آمد. کمینه هم آوری مطلق 98247 در آبان و کمینه هم آوری نسبی 125 تخمک به ازای هر گرم از وزن بدن در تیر ماه محاسبه شد. میانگین شاخص گنادیGSI ماهی ماده در ماه های مختلف محاسبه گردید. فصل تخمریزی طولانی بوده و از دی ماه تا اردیبهشت ماه ادامه داشته است اوج تخم ریزی اردیبهشت ماه برآورد گردید.
http://www.aejournal.ir/article_66972_205f1eef1dac92681c5394fdf401d2fa.pdf
2018-03-21
153
160
گیش پوزه دراز
فصل تخمریزی
طول بلوغ
هم آوری
استان هرمزگان
عیسی
کمالی
kamalyeassa@gmail.com
1
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، بندرعباس، صندوق پستی: 1597- 79145
LEAD_AUTHOR
تورج
ولی نسب
t_valinassab@yahoo.com
2
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، تهران، صندوق پستی: 149-14965
AUTHOR
رضا
دهقانی
rdehghany@yahoo.com
3
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، بندرعباس، صندوق پستی: 1597- 79145
AUTHOR
سید عباس
حسینی
hosseini@pnu.ac.ir
4
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، بندرعباس، صندوق پستی: 1597- 79145
AUTHOR
ولی نسب، ت.، 1392. تعیین توده زنده کفزیان به روش مساحت جاروب شده در آب های خلیج فارس و دریای عمان (گشت های 1388 تا 1390). تهران. مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 227 صفحه.
1
Agarwal, N.K., 2005. Fish reproduction. New Delhi, APH Publishing corporation. ISBN 81-7024-701-2. 180 p.
2
Al-rasady, I.; covender, A. and Al-jufaili, S.M., 2012. Reproductive biology of longnose trevally (Carangoides chrysophrys) in the Arabian Sea, Oman, Environmental Biology of Fishes. Vol. 93, N0. 2, pp: 177-184.
3
Bagenal, T.B., 1987. Methods for assessment of fish production in freshwater. Third edition, Blackwell Scientific Publication, XVT. 365 p.
4
Biswas, S.P., 1993. Manual of Methods in fish Biology. South Asian Publisheres PVR. LTD., India. 157 p.
5
Bobko, S.J. and Steven, A.B., 2004. Maturity, ovarian cyclc, fecundity, and age-specific parturition of black rock fish (Sebastes melanops), J. Fish. Bull. Vol. 102, pp: 418-429.
6
Crabtree, R.E.; Peter, B.H. and Derke, S., 2001. Age, growth, and reproduction of permit (Trachinotus falcatus) in florida water. J. Fish. Bull. Vol. 100, pp: 26-34.
7
DeMartini, E.E.; James, H.U. and Williams, H.A, 2000. Sexual maturity, sex ratio, and size composition of swordfish, Xiphias gladius, caught by the Hawaii-based pelagic longline fishery. J. Fish. Bull. Vol. 98, pp: 489-505.
8
Fennessy, S.T., 2000, Aspects of the biology of four species of sciaenidae from the east coast of south Africa, Estuarine, coastal and shelf science. Vol. 50, pp: 259-269.
9
Fischer, W. and Bianchi, G., 1984. FAO Species identification sheets, fishing area 51, west Indian Ocean.
10
Funamoto, T.; Aoki, I. and Wada, Y., 2002. Reproductive characteristics of Japanese anchovy, Engraulis japonicus, in two bays of japan. J. Fisheries Reasearch. Vol. 70, pp: 71-80.
11
Grandcourt, E.M.; Al Abdessalaam, T.Z.; Francis, F. and Al Shamsi, A.T., 2004. Biology and stock assessment of the sparids, Acanthopagras bifasciatus and Argyrops spinifer (forsskal, 1775), in the southern Persian Gulf. Fisheries research. Vol. 69, pp: 7- 20.
12
King, M., 1995. Fisheries biology assessment and management. Fishing News Books. Vol. 3, No. 5,pp: 151-160.
13
Nicolsky, G.V., 1963. The Ecology of fishes. Academic press. 352 p.
14
Pearce, M., 1998. Aquaculture potential of banded grunter. Queensl. Aquac. News. Vol. 13, pp: 4-5.
15
Sparre, P. and Venema, C., 1998. Introduction to tropical fish stock assessment. FAO, part-1-manual. 220 p.
16
White Geoffrey, G.; Thomas, A.M. and Herbert, M.A., 2003, Reproductive seasonality, fecundily and spawning frequency of tautog (tautoga onitis) in the lower Chesapeake bay and coastal waters of Virginia. J. Fish. Bull. pp: 454-442.
17
Wootton, R.J., 2003. Ecology of teleost fishes, chapman and Hall. 404 p.
18
Yoneda, M.; Muneharu, T.; Hitishi, F.; Takeshita, N.; Takeshita, K.; Matsuyama, M. and Matsuura, S., 2001. Reproductive cycle, fecundily, and seasonal distribution of the anglerfish lophius litulon in the East China and yellow seas. Fish. Bull. Vol. 99, pp: 356-370.
19
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تاثیر مکمل اسانس رازیانه (Foeniculum vulgare) در جیره غذایی بر بلوغ اووسیت ها و رسیدگی جنسی ماهی سیکلید گورخری (Cichlasoma nigrofasciatum)
در تحقیق حاضر، تاثیر مکمل اسانس رازیانه (Foeniculum vulgare) بر بلوغ اووسیت ها و رسیدگی جنسی سیکلید گورخری (Cichlasoma nigrofasciatum) مورد بررسی قرار گرفت. به این منظور، 225 ماهی سیکلید گورخری با میانگین وزنی 0/02±1/65 گرم در آکواریوم های 80 لیتری (15 قطعه ماهی در هر آکواریوم) در تیمارهای با سه تکرار توزیع شدند و به مدت 40 روز با جیره های غذایی حاوی اسانس رازیانه در سطوح صفر، 75، 100، 125، 150 میلی گرم در کیلوگرم به مقدار روزانه 3 درصد وزن بدن، تغذیه شدند. نتایج بافت شناسی گناد (30 روز پس از تغذیه)، زمان رسیدگی جنسی و مدت زمان سپری شده از جفت گیری تا تخم ریزی نشان داد که اغلب اووسیت های گروه های شاهد، 75 و 125 میلی گرم اسانس در مرحله پیش هستگی و تعدادی در مرحله زرده سازی قرار دارند. در تیمار 100 و 150 میلی گرم اسانس، اغلب اووسیت ها در مرحله آخر زرده سازی مشاهده شدند و در مقایسه با سایر تیمارها از تکامل بلوغ بیش تری برخوردار بودند. کم ترین زمان لازم برای رسیدگی جنسی در 150 میلی گرم اسانس مشاهده شد (1/15±78/0 روز) که تفاوت معنی داری با گروه شاهد و سایر تیمارها به جز 100 میلی گرم اسانس، داشت (0/05>p). زمان سپری شده از جفت گیری تا تخم ریزی در گروه شاهد (1/45±17/66 روز) در مقایسه با تمام تیمارهای تغذیه شده با اسانس رازیانه به طور معنی داری طولانی تر بود (0/05>p).
http://www.aejournal.ir/article_66994_57bea6d8ccd377b37abf4399dcfe80b1.pdf
2018-03-21
161
166
اسانس رازیانه
رسیدگی جنسی
سیکلید گورخری
اعظم
ستوده
sotoudehazam2014@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، صندوق پستی: 578
AUTHOR
سکینه
یگانه
skyeganeh@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری، صندوق پستی: 578
LEAD_AUTHOR
تاکی، ا.؛ سالاری، س.؛ بوجارپور، م.؛ ساری، م. و تقی زاده،م.، 1393. تاثیر سطوح مختلف اسانس رازیانه بر صفات تولیدی، خواص کیفی تخ ممرغ و برخی فراسنجه های تولیدمثلی مرغ تخم گذار. نشریه پژوهش های علوم دامی ایران. جلد 6، شماره 2، صفحات 140 تا 149.
1
چنگیزی، ر.؛ متین فر، ع.؛ جمیلی، ش. و غیاثوند، ز.، 1387. مقایسه شاخص های تکثیر ماهی زینتی سیکلید گورخری (Cichlasoma nigrofasciatum)در نسبت های جنسی و دوره های نوری متفاوت. مجله پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. شماره 78، صفحات 135 تا 143.
2
حسین زاده صحافی، ه.، 1380 . بیولوژِی تولید مثل ماهی با تاکید بر ماهی های ایران. موسسه نشر جهاد وابسته به جهاد دانشگاهی واحد تهران. صفحات 2 تا 4.
3
روزبهانی، ش.؛ نظری، ع.ر. و باقرزاده، ژ.، 1391. بررسی تاثیر عصاره اتانولی رازیانه (Foenicolum vulgar) بر رشد و باروری ماهی گپی (Poecilia reticulata). اولین همایش ملی شیلات و آبزیان ایران، دانشگاه علوم و فنون دریائی خرمشهر.
4
زرگری، ع.،1375. گیاهان داروئی، تهران، جلد دوم. صفحات تا 114.
5
صدرفضلایی، س.؛ فرخی، ف. و خانشی، ف.، 1393. تاثیر متفورمین و عصاره آبی رازیانه بر هیستومورفومتری آندومتر رحم و میزان هورمون های استروئیدی در موش های مبتلا به سندرم پلی کیستیک تخمدان. مجله دانشگاه علوم پزشکی قم. دوره 8، شماره 5، صفحات 12 تا 19.
6
عمادی، ح.، 1388. آکواریوم و تکثیر و پرورش ماهی های آکواریومی آب شیرین. انتشارات علمی آبزیان. 364 صفحه.
7
کرم پور، پ.؛ آذرنیا، م.؛ میرابوالقاسمی، غ. و علیزاده، ف.، 1393. تأثیر عصاره هیدروالکلی دانه رازیانه بر غلظت سرمی هورمون های جنسی در رت های ماده نژاد ویستار مبتلا به سندرم تخمدان پلی کیستیک. مجله علمی پژوهشی دانشگاه علوم پزشکی اراک. سال 17، شماره 5، صفحات 71 تا 78.
8
ناجی، ط.؛ حسین زاده، ه.؛ جاذبی زاده، م.ک. و ثمری، ز.، 1389. بررسی اثر ایزوفلاوون های روغن سویا بر رشد و رسیدگی اووسیت ها در ماهی گورامی سه خال ماده نابالغ (Trichogaster trichopterus). فصلنامه پژوهش های مجله علوم و فنون دریائی. سال 5، شماره 3، صفحات 66 تا 73.
9
ناجی، ط.؛ حسین زاده، ه.؛ سمائی، ت. و امانی نژاد، پ.، 1392. بررسی اثر عصاره گیاه رازیانه (Foenicolum vulgar) بر رشد و رسیدگی اووسیت ها در ماهی ماده گورامی سه خال (Trichogaster trichopterus). مجله آبزیان و شیلات. سال 4، شماره 14، صفحات 52 تا 58.
10
Belew, C., 1999. Herbs and the childbearing woman. Journal of Nurse Midwifery. Vol. 44, No. 3, pp: 231-252.
11
Choi, E.M. and Hwang, J.K., 2004. Antiinflammatory analgesic and antioxidant activities of the fruit of Foeniculum vulgare. Fitoterapia. Vol. 75, No. 6, pp: 557-565.
12
Clotfelter, E.D. and Rodriguez, A.C., 2006. Behavioral changes in fish exposed to phytoestrogens. Environmental Pollution. Vol. 144, No. 3, pp: 833-839.
13
Dixon, R.A., 2004. Phytoestrogens. Annu. Rev. Plant Biology. Vol. 55, pp: 225-261.
14
Francis, O.M.; Akinlolu, A.A. and Kehinde, O.A., 2013. Assessment of bitter leaf (Vernonia amygdalina) as fertility enhancer in the giant African catfish (Heterobranchus bidorsalis) broodstock. Academia Journal of Biotechnology. Vol. 1, No. 2, pp: 36-40.
15
Hornok, L., 1992. The Cultivation of Medicinal Plants. In Hornok L. (ed.). Cultivation and Processing of Medicinal Plants. John Wiley and Sons, Chichester. pp: 187-196.
16
Khazaei, M.; Montaseri, A.; Khazaei, M.R. and Khanahmadi, M., 2011. Study of Foeniculum vulgare effect on folliculogenesis in female mice. International journal of fertility and sterility. Vol. 5, No. 3, pp: 122-127.
17
Maack, G. and Segner, H., 2003. Morphological development of the gonads in zebra fish. Journal of fish biology. Vol. 62, No. 4, pp: 895-906.
18
Nazari, A. and Roozbehani, S., 2015. Influence of Fennel Foeniculum Vulgar Extract on Fertility, Growth rate and Histology of Gonads on Guppy Poecilia reticulata. Turkish Journal of Fisheriesand Aquatic Sciences.special issue. pp: 463-469.
19
Seifi Berenjestanaki, S.; Esmaeili Fereidouni, A.; Ouraji, H. and Jani Khalili, K., 2014. Influence of dietary lipid sources on growth, reproductive performance and fatty acid compositions of muscle and egg in three-spot gourami (Trichopodus trichopterus) (Pallas, 1770). Aquaculture Nutrition. Vol. 20, No. 5, pp: 494-504.
20
Shafiei, S.S.; Imanpour, M.; Aminian, B. and Gorgin, S., 2010. Histological study of ovarian development and sexual maturity of Kutum (Rutilus kutum Kamenskii, 1901). World Applied Sciences Journal. Vol. 8, No. 11, pp: 1343-1350.
21
Sotoudeh, A. and Yeganeh, S., 2016. Effects of supplementary fennel (Foeniculum vulgare) essential oil in diet on growth and reproductive performance of the ornamental fish, Convict cichlid (Cichlasoma nigrofasciatum). Aquaculture Research. Vol. 47, No. 12, pp: 1-8.
22
Turner, J.V.; AgatonovicKustrin, S. and Glass, B.D., 2007. Molecular aspects of phytoestrogen selective binding at estrogen receptors. Journal of pharmaceutical sciences. Vol. 96, No. 8, pp: 1879-1885.
23
Wootton, R.J. and Smith, C., 2015. Reproductive Biology of Teleoset Fishes. Oxford: Wiley Blackwell. 496 p.
24
Zohar,Y.; Muñoz Cueto, J.A.; Elizur, A. and Kah, O., 2010. Neuroendocrinology of reproduction in teleost fish. General and comparative endocrinology. Vol. 165, No. 3, pp: 438-455.
25
ORIGINAL_ARTICLE
استفاده از آنالیز شکل اتولیت ساجیتا به منظور تفکیک چهار گونه از گیش ماهیان (Carangidae) خلیج فارس
حاشیة اتولیت چهار گونه از ماهیان متعلق به خانوادة گیش ماهیان Carangoides coeruleopinnatus،Carangoides chrysophrys، Carangoides malabaricus و Megalaspis cordyla در آبهای خلیج فارس به منظور تفکیکپذیری بررسی شد. پس از تصویربرداری از اتولیتها، حاشیهها به کمک تحلیل فوریة بیضوی و نرمافزار Shape مورد بررسی قرار گرفت. کد زنجیری، هارمونیکها و ضرایب فوریة بیضوی برای هر نمونه به دست آمد. توسط مقادیر ویژه، بازسازی میانگین حاشیة اتولیت انجام شد. شکل اتولیت از طریق توصیف گرهای فوریة بیضوی مربوط به 20 هارمونیک و به وسیلة شش شاخص شکلی مورد توصیف قرار گرفت. این چهار گونه با استفاده از شاخصهای شکلی (72/2 %)، ضرایب فوریة بیضوی (73/7 %) یا ترکیبی از دو روش (72/2 %) به شکل کاملاً موفقیت آمیزی متمایز شدند. در تحلیل تشخیصی با استفاده از شاخصهای شکلی به تنهایی، تفکیک مناسبی در بین گونهها انجام نگرفت. نتایج حاصل از تجزیه مؤلفههای اصلی نیز نشانگر این موضوع است که درصد واریانس در مؤلفههای اصلی اول هرگونه بیش ترین میزان را داشته و مؤلفههای اصلی به ترتیب در حال کاهش میباشند. ولی واریانس تجمعی بیانگر این مطلب است که شکل تخمین زده شده توسط تبدیل فوریة بیضوی تا چه میزان قادر به توضیح تصویر گونة مربوطه است. نتایج مطالعه حاضر نشان میدهد که ترکیب اندازه بر مبنای توصیف گرهای شکلی و توصیف گرهای فوریه بیضوی ابزاری سودمند در تفکیک 4 گونه از گیش ماهیان خلیج فارس است.
http://www.aejournal.ir/article_67097_8e1d995c916f58ce5cba911ba825abdf.pdf
2018-03-21
167
178
گیش ماهیان
اتولیت
تحلیل فوریة بیضوی
هارمونیک
کدهای زنجیری
آناهیتا
فشندی
fashandianahita@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم وتحقیقات، تهران، ایران، صندوق پستی: 775-14515
AUTHOR
تورج
ولی نسب
t_valinassab@yahoo.com
2
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، تهران، صندوق پستی: 149-14965
LEAD_AUTHOR
فرهاد
کیمرام
farhadkaymaram@gmail.com
3
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، تهران، صندوق پستی: 149-14965
AUTHOR
سید محمدرضا
فاطمی
reza_fatemi@hotmail.com
4
گروه زیست شناسی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم وتحقیقات، تهران، ایران، صندوق پستی: 775-14515
AUTHOR
صدیق زاده، ز.؛ ولی نسب، ت.؛ وثوقی، غ.ح.؛ فاطمی، م.ر. و مطلبی، ع.ع.، 1391. کاربرد کد تصویری زنجیری در آنالیز شکل اتولیت در دو گونه از ماهیان سرخو از جنسLutjanus. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 4، شماره 4، صفحات 185-198.
1
ولی نسب، ت.، 1392. فرهنگ جامع اسامی ماهیان خلیج فارس و دریای عمان و دریای خزر. انتشارات موج سبز. 340 صفحه.
2
Aguera, A. and Brophy, D., 2011. Use of saggittal otolith shape analysis to discriminate Northeast Atlantic and western Mediterranean stocks of Atlantic saury, Scomberesox saurus saurus (Walbaum). Fisheries Research. Vol. 110, pp: 465-471.
3
Battaglia, P.; Malara, D.; Romeo, T. and Andaloro, F., 2010. Relationships between otolith size and fish size in some mesopelagic and bathypelagic species from the Mediterranean Sea (Strait of Messina, Italy). Scientia Marina. Vol.74, pp: 605-612.
4
Begg, G.A.; Overholtz, W.J. and Munroe, N.J., 2001. The use of internal otolith morphometrics for identification of haddock (Melanogrammus aeglefinus) stocks on George Bank. Fishery Bulletin. Vol .99, pp: 1-14.
5
Cadrin, S.X. and Friedland, K.D., 2005. Morphometric outlines, in Stock Identification Methodology, Cadrin,S.X., et al., Eds., Amsterdam: Elsevier. pp: 173-184.
6
Campana, S.E., 2001. Accuracy, precision and quality control in age determination, including a review of the use and abuse of age validation methods. Journal of Fish Biology. Vol. 59, pp: 197-242.
7
Campana, S.E., 2005. Otolith elemental composition as a natural marker of fish stocks. In: Stock Identification Methods. Academic Press, N.Y. pp: 227-245.
8
Campana, S.E. and Casselman, J.M., 1993. Stock discrimination using otolith shape analysis. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 50, No. 1, pp: 1062-1083.
9
Carlo, J.M.; Brabeitos, M.S. and Lasker, H.R., 2011. Quantifying complex shapes: Elliptical Fourier Analysis of Octocoral sclerites. The Biological Bulletin. Vol. 220, pp: 224-237.
10
Crampton, J.S., 1995. Elliptic Fourier shape analysis of fossil bivalves: some practical considerations. Lethaia. Vol. 28, pp: 179-186.
11
Devries, D.A.; Grimes, Ch.B. and Prager, M.H., 2002. Using otolith shape analysis to distinguish eastern Gulf of Mexico and Atlantic Ocean stocks of king mackerel. Fisheries Research. Vol. 57, pp: 51-62.
12
Dou, S.Z.; Yu, X. and Cao, L., 2012. Otolith shape analysis and its application in fish stock discrimination: a case study. Oceanologia et Limnologia Sinica. Vol. 43, pp: 702-712.
13
Gonzalez-Salas, C. and Lenfant, P., 2007. Inter annual variability and intra-annual stability of the otolith shape in European anchovy Engraulis encrasicholus in the Bay of Biscay. Journal of Fish Biology. Vol. 70, pp: 35-39.
14
Iwata, H. and Ukai, Y., 2002. Shape: a computer program package for quantitative evaluation of biological shapes based on elliptic Fourier descriptors, Journal of heredity. Vol. 93, pp: 384-385.
15
Kuhl, F.P. and Giardina, C.R., 1982. Elliptic Fourier features of closed contour. Computer Graphics and Image Process. Vol .18, pp: 236-258.
16
L’Abée-Lund, J.H., 1988. Otolith shape discriminates between juvenile Atlantic salmon, Salmo salar L., and brown trout, Salmo trutta L. Journal of Fish Biology. Vol .33, pp: 899-903.
17
Legua, J.; Plaza, G.; Perez, D. and Arkhipkin, A., 2013. Otolith shape analysis as a tool for stock identification of the southern blue whiting, Micromesistius australis. Latin American Journal of Aquatic Research. Vol. 41, No. 3, pp: 479-489.
18
Lestrel, P.E., 1997. Fourier Descriptors and their Application in Biology. Cambridge University Press, UK. 466 p.
19
Lombarte, A.; Chic, O.; Parisi-Baradad, V.; Olivella, R.; Piera, J. and Garcia-Ladona,E., 2006. A web-based environment for shape analysis of fish otoliths. Scientia Marina. Vol. 70, No.1, pp: 147-152.
20
Lord, C.; Morat, F.; Lecomte-Finiger, R. and Keith,P., 2012. Otolith shape analysis for three Sicyopterus (Teleostei: Gobioidei: Sicydiinae) species from New Caledonia and Vanuatu. Environmental Biology of Fishes. Vol. 93, pp: 209-222.
21
Merigot, B.; Letourneur, Y. and Lecomte-Finiger, R., 2007. Characterization of local populations of the common sole Solea solea (Pisces, Soleidae) in the NW Mediterranean through otolith morphometrics and shape analysis. Marine Biology. Vol. 151, pp: 997-1008.
22
Morales-Nin, B., 2000. Review of growth regulation processes of otolith daily increment formation. Journal of Fisheries Research. Vol. 46, pp: 53-67.
23
Morat, F.; Betoulle, S.; Robert, M., Thailly, A.F.; Biagianti-Risbourg, S. and Lecomte-Finiger, R., 2008. What can otolith examination tell us about the level of perturbations of Salmonid fish from the Kerguelen Islands? Ecology of Freshwater Fish. Vol. 17, pp: 617-627.
24
Morat, F.; Mante, A.; Drunat, E.; Dabat, J.; Bonhomme, P.; Harmelin-Vivien, M. and Letourneur, Y., 2011. Diet of the Mediterranean European shag, Phalacrocorax aristotelis desmarestii, its ecological significance and interaction with local fisheries in the Riou Archipelago (Marseilles, France). Vie Milieu. Vol. 61, pp: 77-86.
25
Paxton, J.R., 2000. Fish otoliths: Do sizes correlate with taxonomic group, habitat and/or luminiscense? Royal Society. Vol. 355, pp: 299-1303.
26
Pavlov, D.A., 2016. Differentiation of Three Species of the Genus Upeneus (Mullidae) Based on Otolith Shape Analysis. Journal of Ichthyology. Vol. 56, No. 1, pp: 37-51.
27
Ponton, D., 2006. Is geometric morphometric efficient for comparing otolith shape of different fish species? Journal of Morphology. Vol. 267, pp: 750-757.
28
Reed, D.L.; Carpenter, K.E.; and deGravelle, M.J., 2002. Molecular systematic of the Jacks (Perciformes: Carangidae) based on mitochondrial cytochrome b sequences using parsimony, likelihood, and Bayesian approaches. Molecular Phylogenetics and Evolution. Vol. 23, pp: 513-524.
29
Reichembacher, B.; Sienknecht, U.; Küchenhoff, H.and Fenske, N., 2007. Combined otolith morphology and morphometry for assessing taxonomy and diversity in fossil and extant Killifish (Aphanius prolebias). Journal of Morphology. Vol. 268, pp: 898-915.
30
Renán, X.; Pérez-Díaz, E.; Colás- Marrufo, T.; Garza Pérez, J. and Brulé, T., 2010. Using Otolith Shape Analysis to Identify Different Stocks of Epinephelus morio from the Campeche Bank. 63rd Gulf and Caribbean Fisheries Institute. pp: 200-206.
31
Rossi-Wongtschowski, C.L.D.B; Siliprandi, C.C.; Brenha, M.R.; Giaretta, M.B.; Conversani, V.R.M. and Santificetur, C., 2014. Atlas of marine bony fish otoliths (sagittae) of southeastern southern Brazil. Brazilian Journal of Oceanography. Vol. 62, pp: 1-103.
32
Sadighzadeh, Z.; Tuset, V.M.; Valinassab, T.; Dadpour, M.R. and Lombarte, A., 2012. Comparison of different otolith shape descriptors and morphometric for the identification of closely related species of Lutjanus spp. from the Persian Gulf. Marine Biology Research. Vol. 8, pp: 802-814.
33
Sadighzadeh, Z.; Valinassab, T.; Lombarte, A. and Tuset, V., 2014. Use of otolith shape for stock identification of Johns snapper, Lutjanus johnii (Pisces: Lutjanidae), from the Persian Gulf and the Oman Sea. Fisheries Research. Vol. 155, pp: 59-63.
34
Simoneau, M.; Casselman, J.M. and Forti, N.R., 2000. Determining the effect of negative allometry (length/height relationship) on variation in otolith shape in lake trout (Salvelinus namaycush), using Fourier-series analysis. Canadian Journal of Zoology. Vol. 78, pp: 1597-1603.
35
Škeljo, F. and Ferri, J., 2012. The use of otolith shape and morphometry for identification and size-estimation of five wrasse species in predator-prey studies. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 28, pp: 524-530.
36
Stransky, C. and Mac Lellan, S.E., 2005. Species separation and zoogeography of redfish (genus Sebastes) by otolith shape analysis, Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 62, No. 10, pp: 2265-2276.
37
Tracey, S.R.; Lyle, J.M. and Duhamel, G., 2006. Application of elliptical fourier analysis of otolith form as a tool for stock identification. Fisheries Research. Vol. 77, pp: 138-147.
38
Tuset, V.M.; Lozano, I.J.; Gonz_alez, J.A.; Pertusa, J.F. and Garcı´a-Dı´az, M.M., 2003. Shape indices to identify regional differences in otolith morphology of scomber Serranus cabrilla (L., 1758). Journal of Applied Ichthyology. Vol. 19, pp: 88-93.
39
Tuset, V.M.; Lombarte, A.; Gonzales, J.A.; Pertusa, J.F. and Lorentes, M.J., 2003a. Comparative morphology of the sagittal otolith in Serranus spp. Journal of Fish Biology. Vol. 63, pp: 1491-1504.
40
Tuset, V.M.; Lozano, I.J.; González, J.A.; Pertusa, J.F. and García- Díaz, M.M., 2003b. Shape indices to identify regional differences in otolith morphology of comber, Serranus cabrilla (L., 1758). Journal of Applied Ichthyology. Vol. 19, pp: 88-93.
41
Tuset, V.M. and Rosin, P.L., 2006. Sagittal otolith shape used in the identification of fishes of the genus Serrranus. Fisheries Research. Vol. 81, pp: 316-325.
42
Valinassab, T.; Seifabadi, J.; Homauni, H. and Afraie Bandgi, M.A., 2012. Relationships between fish and otolith morphology in ten clupeids from the Persian Gulf and Gulf of Oman. Cybium, Vol. 36, No. 4, pp: 505-509.
43
Vignon, M. and Morat, F., 2010. Environmental and genetic determinant of otolith shape revealed by a non indigenous tropical fish. Marine Ecology Progress Series. Vol. 411,pp: 231-241.
44
Vignon, M., 2012. Ontogenic trajectories of otolith shape during shift in habitat use: interaction between otolith growth and environment. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 420-421, pp: 26-32.
45
Yu, X.; Cao, L.; Liu, J; Zhao, B.; Shan, X. and Dou, S., 2014. Application of otolith shape analysis for stock discrimination and species identification of five goby species (Perciformes: biidae) in the northern Chinese coastal waters. Chinese Journal of Oceanology and Limnology. Vol. 32, pp: 1060-1073.
46
Zorica, B.; Sinovčić, G. and Čikeš Keč, V., 2010. Preliminary data on the study of otolith morphology of five pelagic fish species from the Adriatic Sea (Croatia). Acta Adriat. Vol. 51, No. 1, pp: 89-96.
47
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه سمیت نانو ذرات نقره در سه گونه ماهی کپورمعمولی (cyprinus carpio)،آمور (Ctenopharyngodon idella) و فیتوفاگ (Hypophthamichthys molitrix)
ترکیبات نقره از دیرباز اثرات ضدعفونی کننده داشته و در آبزیان نیز امکان استفاده دارند. در این تحقیق اثرات سمی (50LC) دو محصول کلوئیدی محلول در آب نانوذرات نقره (L2000 و LS2000) در سه گونه ارزیابی گردید. بدینمنظور ماهی ها به مدت 96 ساعت در معرض7 یا 8 غلظت متوالی (هر غلظت در سه تکرار) از دو نوع نانوذرات نقره قرار داده شده و تلفات روزانه در هر غلظت ثبت گردید. سپس حداکثرغلظت مجاز (MAC) نیز محاسبه شد. طبق نتایج میزان 50 LC نود و شش ساعته L2000 در ماهی کپور، آمور و فیتوفاگ به ترتیب برابر 0/099 و 0/076 و 0/238 میلی گرم در لیتر و میزان 50 LC نود و شش ساعته LS2000 به ترتیب برابر 0/058 و0/057 و 0/094 میلی گرم در لیتر محاسبه شد. 99 LC نود و شش ساعته نانوذرات نقره نوع L2000 در این سه ماهی به ترتیب برابر 0/246، 0/135، 0/658 میلی گرم در لیتر و در مورد Ls2000 به ترتیب برابر 0/092 ،0/096 ، 0/161 میلی گرم در لیتر بود، که نشان دهنده تفاوت معنی دار این دو غلظت در هر سه ماهی ذکر شده است (0/05>p). حداکثر غلظت مجاز (MAC) نانوذرات نقره L2000 و LS2000 در ماهی کپور به ترتیب برابر 0/010 و0/006 میلی گرم در لیتر، در ماهی آمور به ترتیب برابر 0/008 و 0/006 میلی گرم در لیتر و برای فیتوفاگ به ترتیب برابر 0/024 و 0/009 میلی گرم در لیتر مشخص گردید. نتایج علاوه بر تأکید بر حساسیت بالای این سه گونه ماهی به این دو نانوذره نقره، تفاوت معنی دار سمیت این دو نانوذره در سه گونه ماهی مورد بررسی را نشان داد (0/05>p).
http://www.aejournal.ir/article_67189_3753ecc0fa917a12495efbd172fe1c32.pdf
2018-03-21
179
184
کپورمعمولی (cyprinus carpio)
آمور (Ctenopharyngodon idella)
فیتوفاگ (Hypophthamichthys molitrix)
نانوذرات نقره
سمیت
حداکثر غلظت مجاز (MAC)
مجتبی
علیشاهی
alishahimoj@gmail.com
1
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران، صندوق پستی: 135
LEAD_AUTHOR
مهرزاد
مصباح
mehrmesbah@yahoo.com
2
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران، صندوق پستی: 135
AUTHOR
زهرا
طولابی دزفولی
z.tulaby@gmail.com
3
دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران، صندوق پستی: 135
AUTHOR
علیشاهی، م.؛ مصباح، م. و قربانپور، م.، 1390. بررسی سمیت نانوذرات نقره در چهار گونه ماهی، مجله دامپزشکی ایران. دوره 7، شماره 1، صفحات 36 تا 41.
1
Bar-Ilan, O.; Albrecht, R.M.; Fako, V.E. and Furgeson, D.Y., 2009. Toxicity assessments of multisized gold and silver nanoparticles in zebrafish embryos. Small. Vol. 5, pp: 1897-1910.
2
Bilberg, K.; Malte, H.; Wang, T. and Baatrup, E., 2010. Silver nanoparticles and silver nitrate cause respiratory stress in Eurasian perch (Percafluviatilis). Aquatic Toxicology. Vol. 96, pp: 159-165.
3
Chae, Y.J.; Pham, C.H.; Lee, J.; Bae, E.; Yi, J. and Gu, M.B., 2009. Evaluation of the toxic impact of silver nanoparticles on Japanese medaka (Oryzias latipes). Aquatic Toxicology. Vol. 94, pp: 320-327.
4
Chen, X. and Schluesener, H.J., 2008. Nanosilver: A nanoproduct in medical application. Toxicology letters. Vol. 176, pp: 1-12.
5
Choi, J.E.; Kim, S.; Ahn, J.H.; Youn, P.; Kang, J.S.; Park, K.;Yi, J. and Ryu, D.Y., 2010. Induction of oxidative stress and apoptosis by silver nanoparticles in the liver of adult zebrafish. Aquatic Toxicology. Vol. 100, pp: 151-159.
6
Choi, O. and Hu, Z., 2008. Size dependent and reactive oxygen species related nanosilver toxicity to nitrifying bacteria. Environmental Science and Technology. Vol. 42, pp: 4583-4588.
7
Choi, O.; Yu, C.P.; Fernández, G.E. and Hu, Z., 2010. Interactions of nanosilver with Escherichia coli cells in planktonic and biofilm cultures. Water Research. Vol. 44, pp: 6095-6103.
8
Chopra, I., 2007. The increasing use of silver-based products as antimicrobial agents: A useful development or a cause for concern? The Journal of Antimicrobial Chemotherapy. Vol. 59, pp: 587-590.
9
Franci, G.; Falanga, A.; Galdiero, S.; Palomba, L.; Rai, M.; Morelli, G. and Galdiero, M., 2015. Silver nanoparticles as potential antibacterial agents. Molecules. Vol. 20, pp: 8856-8874.
10
Gong, P.; Li, H.; He, X.; Wang, K.; Hu, J.; Tan, W.; Zhang, S. and Yang, X., 2007. Preparation and antibacterial activity of Fe3 O4-Ag nanoparticles. Nanotechnology. Vol. 18, pp: 285604.
11
Griffitt, R.J.; Luo, J.; Gao, J.; Bonzongo, J.C. and Barber, D.S., 2008. Effects of particle composition and species on toxicity of metallic nanomaterials in aquatic organisms. Environmental Toxicology and Chemistry. Vol. 27, pp: 1972-1978.
12
Holt, K.B. and Bard, A.J., 2005. Interaction of silver (I) ions with the respiratory chain of Escherichia coli: An electrochemical and scanning electrochemical microscopy study of the antimicrobial mechanism of micromolar Ag. Biochemistry. Vol. 44, pp: 13214-13223.
13
Johari, S.A.; Kalbassi, M.R.; Soltani, M. and Yu, I.J., 2015. Study of fungicidal properties of colloidal silver nanoparticles (AgNPs) on trout egg pathogen, Saprolegnia sp. International J of Aquatic Biology. Vol. 3, pp: 191-198.
14
Katuli, K.K.; Massarsky, A.; Hadadi, A. and Pourmehran, Z. 2014. Silver nanoparticles inhibit the gill Na+/K+-ATPase and erythrocyte AChE activities and induce the stress response in adult zebrafish. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 106, pp: 173-180.
15
Kim, J.S.; Kuk, E.; Yu, K.N.; Kim, J.H.; Park, S.J.; Lee, H.I.; Kim, S.H.; Park, S.J.; Park, Y.H.; Hwang, C.Y.; Kim, Y.K.; Lee, Y.S.; Jeong, D.H. and Cho, M.H., 2007. Antimicrobial effects of silver nanopaticles. Nanomedicine. Vol. 3, pp: 95-101.
16
Kim, S.H.; Woo, K.S.; Liu, B.Y.H. and Zachariah, M.R., 2005. Method of measuring charge distribution of nanosized aerosols.Journal of Colloid and Interface Science. Vol. 282, pp: 46-57.
17
Lansdown, A.B., 2002. Silver I: Its antibacterial properties and mechanism of action. Journal of Wound Care. Vol. 11, pp: 125-130.
18
Lapresta-Ferna´ndez, A.; Ferna´ndez, A. and Blasco, J., 2012. Nanoecotoxicity effects of ngineered silver and gold nanoparticles in aquatic organisms. Trends in Analytical Chemistry. Vol. 32, pp: 40-59.
19
Lee, H.J. and Jeong, S.H., 2005. Bacteriostasis and skin innoxiousness of nanosize silver colloids on textile fabrics. Textile Research Journal. Vol. 75, pp: 551-556.
20
Lee, K.J.; Nallathamby, P.D.; Browning, L.M.; Osgood, C.J. and Xu, X.H.N., 2007. In vivo imaging of transport and biocompatibility of single silver nanoparticles in early development of zebrafish embryos. ACS Nano. Vol. 1, pp: 133-143.
21
McCarthy, M.P.; Carroll, D.L. and Ringwood, A.H., 2013. Tissue specific responses of oysters, Crassostrea virginica, to silver nanoparticles. Aquatic Toxicolog. Vol.138, pp: 123-128.
22
Monfared, A.L.; Bahrami, A.M.; Hosseini, E.; Soltani, S. and Shaddel, M., 2015. Effects of nano-particles on histo pathological changes of the fish. Jornal of Environment and Health Sciences and Engineering. Vol. 13, pp: 62- 73.
23
Nafisi Bahabadi, M.; Hosseinpour Delavar, F.; Mirbaksh, M.; Niknam, K.H. and Johari, S.A., 2016. Assessing antibacterial effect of filter media coated with silver nanoparticles against Bacillus spp. Iranian South Medical Journal. Vol. 19, pp: 1-14.
24
Reynolds, G.H., 2001. Environmental Regulation of Nanotechnology: Some Preliminary Observations. Environmental Law Reporter News and Analysis. Vol. 31, pp: 10681-10688.
25
Scown, T.M.; Santos, E.M.; Johnston, B.D.; Gaiser, B.; Baalousha, M.; Mitov, S.; Lead, J.R.; Stone, V.; Fernandes, T.F.; Jepson, M. and van Aerle, R., 2010. Effects of aqueous exposure to silver nanoparticles of different sizes in rainbow trout. Toxicological Sciences. Vol. 115, pp: 521-534.
26
Shahbazzadeh, D.; Ahari, H.; Rahimi, N.M.; Dastmalchi, F. and Soltani, M.; Fotovat, M.; Rahmannya, J. and Khorasani, N., 2009. The effects of Nanosilver on survival percentage of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Pakistan Journal of Nutrition. Vol. 8, pp: 1178-1180.
27
Sharma, V.K.; Yngard, R.A. and Lin, Y., 2009. Silver nanoparticles: Green synthesis and their antimicrobial activities. Advances in Colloid and Interface Science. Vol. 145, pp: 83-96.
28
Sharma, N.; Rather, M.A.; Ajima, M.N., Gireesh-Babu, P.; Kumar, K.; and Sharma. R., 2016. Assessment of DNA damage and molecular responses in Labeo rohita, following short-term exposure to silver nanoparticles. Food and Chemical Toxicology. Vol. 96, pp: 122-132.
29
Soltani, M.; Torabzadeh, N. and Soltani, A., 2009. Toxicity of nanosilver suspension (Nanocide) in rainbow trout. The First International Congress on Aquatic Animal Health Management and Disease. 112 p.
30
TCR, 1984. OECD guideline for testing of chemicals. Section 2. Effect on biotic systems. pp: 1-39.
31
Wu, Y.; Zhou, Q.; Li, H.; Liu, W.; Wang, T. and Jiang, G., 2010. Effects of silver nanoparticles on the development and histopathology biomarkers of Japanese medaka (Oryzias latipes) using the partial-life test. Aquatic Toxicology. Vol. 100, pp: 160-167.
32
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر نانوذرات نقره بر بافت آبشش ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) تغذیه شده با پیش تیمار پروبیوتیک لاکتوباسیلوس
دراین تحقیق تاثیر مقاوم سازی پروبیوتیک لاکتوباسیلوس بر بافت آبشش ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) در مواجهه با نانوذرات نقره صورت گرفت. سه گروه ماهیان بدون پروبیوتیک و ماهیان تیمار شده شش هفته ای با پروبیوتیک سطح (A) آ (106 کلی فرم/میلی لیتر) و پروبیوتیک سطح (B) بی (107 کلی فرم/میلی لیتر) به مدت ده روز با غلظت تحت کشنده نانو نقره مواجهه شدند. برای بررسی آسیب های بافتی، از مقایسه بافت های مورد نظر با نمونههای شاهد ، آسیب های ایجاد شده تشخیص و بهوسیله میکروسکوپ مجهز به دوربین عکس برداری صورت گرفت. نتایج نشان داد که عارضه هایی مانند نفوذ گلبول های خونی، ادم سلولی و هایپرتروفی در همه تیمارها، آئوریسم لاملایی و برآمدگی اپی تلیوم تیغه ثانویه تنها در تیمارهای تحت تاثیر نانو ذرات نقره، عارضه اتصال تیغه های مجاور تنها در تیمارهای تحت تاثیر پروبیوتیک و عارضه تورم سلول های سنگفرشی که تحت تاثیر پروبیوتیک و نانو ذرات نقره بودند، مشاهده گردید. نتیجه گیری کلی این تحقیق نشان داد که عارضه های مربوط به تیمار نانونقره (تیمار4) بیش تر از سایر تیمارهای آزمایشی بود و تغییرات بافتی مانند نفوذ گلبول های خونی، ادم سلولی و هایپرتروفی در تمام تیمارهای آزمایشی وجود داشت و این عوارض بیش ترین عوارض مشاهده شده در بافت آبشش بودند و سطوح مختلف پروبیوتیک نتوانست اثر مخرب نانو نقره را بر بافت آبشش بهبود ببخشد بلکه خود نیز باعث عوارضی در بافت آبشش گردید ولی عوارض آن در مقایسه با نانو ذره نقره کم تر بود.
http://www.aejournal.ir/article_67255_23ab0adddcfbd5cc56719198e650834c.pdf
2018-03-21
185
192
ماهی
هیستوپاتولوژی
نانو ذرات فلزی
پروبیوتیک
روح ا..
شیخ ویسی
roholla_veisi@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران، صندوق پستی: 487-49175
AUTHOR
سید علی اکبر
هدایتی
hedayati@gau.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران، صندوق پستی: 487-49175
LEAD_AUTHOR
اکرمی، ر.؛ کریم آبادی، ع.؛ محمدزاده، ح. و احمدی فر، ا.، 1388. تاثیر پربیوتیک مانان الیگوساکارید بر رشد، بازماندگی، ترکیب بدن و مقاومت به تنش شوری در بچه ماهی سفید (Rutilus frisii kutum). مجله علوم و فنون دریایی. دوره 8، شمار 3 تا 4، صفحات 47 تا 57.
1
ستاری، م.؛ شاهسونی، د. و شفیعی، ش.، 1382. ماهی شناسی2. انتشارات حق شناس. 502 صفحه.
2
هدایتی، س.ع.؛ قربانی، ر.؛ باقری، ط.؛ احمدوند، ش.و جهانبخشی، ع.، 1392. بررسی اثرات سمیت کشنده نانواکسید روی (ZnO NPs)، نانو اکسید مس، (CuONPs) و نانو دی اکسید تیتانیوم (TiO2 NPs)و بررسی اثرات سمیت تحت کشنده آن ها بر فاکتورهای خون و بافت آبشش ماهی قرمز، کپورمعمولی و کلمه. طرح پژوهشی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 29 صفحه.
3
هدایتی، س.ع؛ قادرمزی، ع. و قادری، ف.، 1392. سم شناسی آبزیان. انتشارات دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 210 صفحه.
4
Alazemi, B.M.; Lewis, J.W. and Andrews, E.B., 1996. Gill damage in the freshwater fish Gnathonemus petersii (family: Mormyridae) exposed to selected pollutants: an ultrastructural study. Environmental Technology. Vol. 17, No. 3, pp: 225-238.
5
Cerezuela, R.; Cuesta, A. and Meseguer, J., 2008. Effect of inulin on gilthead Seabream (Sparus aurata) innate immune parameters. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 24, No. 5, pp: 663-668.
6
Chen, J.; Dong, X.; Xin, Y. and Zhao, M., 2011. Effects of titanium dioxide nano particles on growth and some histological parameters of zebrafish (Danio rerio) after a long term exposure. Aquatic Toxicology. Vol. 101, No. 3, pp: 493-499.
7
Cheraghi, A.; Bohrani, N. and Malekfar, R., 2004. Technology office of the presidential committee on nanotechnology policy. Applications of Nanotechnology in the Diagnosis and Treatment of Diseases. Vol. 5, pp: 85-94.
8
Di Giulio, R.T. and Hinton, D.E., 2008. The Toxicology of Fishes. Taylor Francis. 319-884. Dietary inulin and oligosaccharides as prebiotics for weaning Turbot (Psetta maxima). Aquaculture International. Vol. 14, pp: 219-229.
9
Finney, D., 1971. Probit analysis, a statistical treatment of the sigmoid response curve. Cambridge. 256 p.
10
Handy, R.D., 2008. Manufactured nanoparticles: their uptake and effects on fish a mechanistic analysis. Ecotoxicology. Vol. 17, No. 5, pp: 396-409.
11
Hedayati, A.; Jahanbakhshi, A.and Qaderi Rmazy, F., 2013. Aquatic Toxicology, Vol. I, First edition. pp: 70-76.
12
Irianto, A. and Austin, B., 2002. Probiotic in aquaculture, Journal of Fish Diseases. Vol. 25, pp: 1-10.
13
Kim, D.H. and Austin, B., 2006. Innate immune responses in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum) induced by probiotics. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 21, No. 5, pp: 24-513.
14
Saeedi Far, M.; Roodsari, H.V.; Zamini, A.; Mirrasooli, E. and Kazemi, R., 2012. The effects of diazinon on behavior and some hematological parameters of fry rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Jurnal of World Journal of Fish and Marine Sciences. Vol. 4, pp: 369-375.
15
Tovar Ramirez, D.; Zambonino, J.; Cahu, C.; Gatesoupe, F.J.; Vazquez Juarez, R. and Lésel, R., 2002. Effect of live yeast incorporation in compound diet on digestive enzyme activity in sea bass (Dicentrarchus labrax) larvae. Aquaculture. Vol. 204, pp: 113-123.
16
Verschuere, L.; Dhont, J.; Sorgeloos, P. and Verstraete, W., 2000. Probiotic bacteria as biological control agents in aquaculture. Microbiology and Molecular Biology Reviews. Vol. 64, pp: 655-671.
17
Yoshida, M.; Ishigaki, K.; Nagai, T.; Chikyu, M. and Pursel, V.G., 1993. Glutathione concentration during maturation and after fertilization in pig oocytes: relevance to the ability of oocytes to form male pronucleus. Biology of Reproduction. Vol. 49, No. 1, pp: 89-94.
18
Ziaei Nejad, S.; Habibi Rezaei, M.; Azari Takami, G.; Lovett, D.L.; Mirvaghefi, A.R. and Shakouri, M., 2006. The effect of Bacillus spp. bacteria used as probiotics on digestive enzyme activity, survival and growth in the Indian white shrimp Fenneropenaeus indicus. Aquaculture. Vol. 252, No. 2-4, pp: 516-524.
19
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات پروبیوآنزیم تغذیه ای بر شاخص های رشد، خون شناسی و پاسخ های ایمنی در ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
با هدف بررسی تاثیر پروبیوآنزیم تغذیهای بر شاخصهای رشد ، خون شناسی و پاسخ های ایمنی در ماهی قزل آلای رنگین کمان تیمارهای 1: گروه تغذیه شده با غذای بدون پروبیوآنزیم، 2: گروه تغذیه شده با غذای حاوی 0/3 گرم پروبیوآنزیم در هر کیلوگرم غذا و 3: گروه تغذیه شده با غذای حاوی 0/5 گرم پروبیوآنزیم در هر کیلوگرم غذا، با 3 تکرار، طی مدت 60 روز با هم مقایسه شدند. تعداد 30 قطعه ماهی قزل آلای رنگین کمان با میانگین وزنی 2/7±26/3 گرم در هر یک از مخازن فایبرگلاس 200 لیتری ذخیره سازی شدند. در انتهای دوره، شاخص های رشد، خون شناسی و پاسخ های ایمنی سنجش گردیدند. براساس نتایج، اختلاف معنی داری بین تیمارهای 2و3 با تیمار1 در شاخص های رشد، تغذیه و شاخص های خونی گلبول قرمز مشاهده نشد (0/05<P). ولی میانگین تعداد گلبول های سفید و نیز درصد گلبول های نوتروفیل در تیمار 3 با اختلاف معنی داری (0/05>P) بیش تر از گروه ماهیان شاهد بود. اجزای کمپلمان در سرم ماهیان تیمار3 نسبت به تیمار شاهد با اختلاف معنی داری بیش تر بود (0/05>P). فعالیت راه میانبر کمپلمان و ایمنوگلوبولین (IgM) بین تیمارهای متفاوت، اختلاف معنی داری را نشان ندادند (0/05<P). میزان لایزوزیم و گلوبولین کل در ماهیان تیمار 3 به طور معنی داری (0/05>P) در مقایسه با تیمار شاهد بیش تر بود. براساس نتایج، تاثیر قابل توجه پروبیوآنزیم بر شاخص های رشد و تغذیه مشاهده نگردید. با این وجود، براساس یافته ها می توان گفت پروبیوآنزیم مورد استفاده، دارای اثر ایمنی زایی در ماهی قزل آلای رنگین کمان می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_65209_ef61caa174803a6a93ed6c55e29d3eba.pdf
2018-03-21
193
204
قزل آلای رنگین کمان
پروبیوآنزیم
رشد
ایمنی
ابوالحسن
راستیان نسب
rastian1921@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، ایران
AUTHOR
سید محمد
موسوی
seied1356@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
حسین
ذوالقرنین
zolgharnein@kmsu.ac.ir
3
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، ایران
AUTHOR
همایون
حسین زاده صحافی
h_hosseinzadeh@ifro.ir
4
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، صندوق پستی: 6116- 14155
AUTHOR
اسلامی فارسانی، ا.، 1390. بررسی اثر ماده محرک ایمنی ایمونوفن (اسانس گیاه Echinacea purpurea) بر اندیس های رشد و برخی فاکتورهای خونی و ایمنی ماهی قزل آلای رنگین کمان انگشت قد. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات اهواز. 75 صفحه.
1
امیدی زاده، م.؛ ولی پور، ن. و پوررضا، ج.، 1393. اثر پودر سماق و پروبیوآنزیم بر عملکرد و فراسنجه های خونی بلدرچین ژاپنی. نشریه علوم دامی(پژوهش و سازندگی). دوره 104، شماره 3، صفحات 183 تا 194.
2
پورمظفر، س.؛ نفیسی بهابادی، م.؛ مهاجری، ژ.؛ محمدی، م. و سلیمی بجستانی، م. ر.، 1393. مطالعه اثر ماکروگارد بر پارامترهای رشد، خونی و پاسخ های ایمنی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) مواجه یافته با باکتری استرپتوکوکوس اینایی(Streptococcus iniae). مجله تحقیقات آزمایشگاهی دامپزشکی. دوره 6، شماره 1، صفحات 27 تا 36.
3
توکمه چی، ا.؛ شمسی، ح.؛ مشکینی، س.؛ دلشاد، ر. و قاسمی مغانجوقی، ا.، 1391. بهبود شاخص های رشد و برخی از پارامترهای پاسخ ایمنی ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) با استفاده توام از پروبیوتیکLactobacillus rhamnosus و ویتامین C. مجله علمی شیلات ایران. سال 21، شماره 3، صفحات 13 تا 22.
4
حسین پور، م.، 1393. ارزیابی عملکرد رشد و بقای لارو میگوی وانامی با استفاده از سطوح مختلف پروبیوآنزیم در جیره غذایی(Litopenaeus vannamei). پایان نامه دوره کارشناسی ارشد رشته تکثیر و پرورش آبزیان. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 41 صفحه.
5
حسین پور، م.؛ جعفری، و.؛ زنده بودی، ع. و حاجی مرادلو، ع.، 1394. تأثیر پروبیوآنزیم جیره بر فعالیت آنزیم های هضمی میگوی وانامی (Litopenaeus vannamei). فصلنامه علوم و فنون شیلات. سال 4، شماره 1، صفحات 33 تا 41.
6
رحمتی اندانی،ح.؛توکمه چی،ا.؛ مشکینی،س. وابراهیمی،ه.، 1389. مقاومت ماهی قزل آلای رنگین کمان در برابر عفونت با آئروموناس هیدروفیلا و یرسینیا روکری با استفاده از لاکتوباسیلوس های جدا شده از روده ماهی کپور معمولی. مجله دامپزشکی ایران. سال 7، شماره 2، صفحات 26 تا 37.
7
علیشاهی، م.، 1388. مقدمه ای بر ایمنی شناسی آبزیان. تالیف سوآین، پی، ساهو، پی. کی.، آیاپان، اس. انتشارات دانشگاه شهید چمران اهواز .499 صفحه.
8
نامداری انراد، ا. و ضیائی نژاد، س.، 1392. اثرات سطوح مختلف پروبیوآنزیم بردرصد بازماندگی و برخی شاخص های رشد در بچه ماهی گورامی (Trichogaster trchopterus). اولین همایش سراسری کشاورزی و منابع طبیعی پایدار. 10تا 12 بهمن، تهران.
9
نجفی، ر.؛دانشیار، م.؛ شیردل، ص. و حسینی، ح.، 1389. مطالعه تاثیر پروبیوآنزیم و گریندازیم بر عملکرد جوجه های گوشتی. خلاصه مقالات چهارمین کنگره علوم دامی کشور. صفحات 1086 تا 1089.
10
نوبخت، ع.؛بیگ بابایی، ر. وتقی زاده، ا.، 1391. اثرات افزودنی پروبیو آنزیم بر عملکرد و متابولیت های خون جوجه های گوشتی تغذیه شده با سطوح مختلف گندم و جو. نشریه پژوهش های علوم دامی. سال 22، شماره 3، صفحات 1 تا 14.
11
نیک پیران، ح.، 1389. بررسی تاثیر استفاده از ترکیب توربوتوکس و پروبیوآنزیم در جیره غذایی بر عملکرد جوجه های گوشتی و تیتر حاصل از واکسن گامبرو. گزارش نهایی طرح پژوهشی دانشگاه آزاد اسلامی. واحد تبریز. 30 صفحه.
12
یزدی صمدی، ب.؛ رضایی، ع. و ولی زاده، م.، 1376. طرح های آماری در پژوهش های کشاورزی، انتشارات دانشگاه تهران. 544 صفحه.
13
Ai, Q.; Mai, K.; Zhang, W.; Xu, W.; Tan, B.; Zhang, C. and Li, H., 2007. Effects of exogenous enzyme (phytase, non-starch polysaccaride enzyme) in diets on growth, feed utilization, nitrogen and phosphorus excretion of japanese seabass, Lateolabrax japonicus. Comparative Biochemistry and Physiology, Part A: Molecular and Integrative Physiology. Vol. 147, pp: 502-208.
14
Amar, E.C.; Kiron, V.; Satoh, S. and Watanabe, T., 2004. Enhancement of innate immunity in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum) associated with dietary intake of carotenoids from natural products. Fish Shellfish Immunology. Vol. 16, pp: 527-537.
15
Balcazer, J.L.; De Blas, I.; Ruiz-Zarzuela, I.; Vendrell, D.; Girones, O. and Muzquiz, J.L., 2007. Enhancementof the immuneresponse and protection induced by probiotic lactic acid bacteria against furunculosis in rainbowtrout (Oncorhynchus mykiss). FEMS Immunology and Medical Microbiology (Federation of European Microbiological Societies). Vol. 51, pp: 185-193.
16
Bedford, M.R. and Partridge, G., 2010. Enzymes in farm animal nutrition (2nd edition).CAB international publication, Bodmin.UK.
17
Bogevik, A.S., 2015. Xylanase supplementation in fish feed. Nofima, Norway. 10 p.
18
Cerezuela, R.; Guardiola, F.A.; Gonzalez, P.; Meseguer, J. And Esteban, A., 2012. Effects of dietary Bacillus subtilis, Tetraselmis chuii, and Phaeodactylum tricornutum, singularly or in combination, on the immune response and disease resistance of sea bream (Sparus aurata L.). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 33, pp: 342-349.
19
Clerton, P.; Troutaud, D.; Verlhac, V.; Gabraudan, J. and Deschaux, P., 2001. Dietary vitamin E and rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) phagocyte function: effect on gut and head kidney leucocyte. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 11, pp: 1-13.
20
Dalsgaard, J.; Verlhac, V.; Hjermitslev, N.H.; Ekmann, K.S.; Fischer, M.; Klausen, M. and Pedersen, P.B., 2012. Effects of exogenous enzymes on apparent nutrient digestibility in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) fed diets with high inclusion of plant-based protein. Animal Feed Science Technology. Vol. 171, pp: 181-191.
21
Davis, D.A.; Samocha, T.N.; Bullis, R.A.; Pantnaik, S.; Browdy, C.L.; Stokes A.D. and Atwood H.L., 2004. Practical diet for (Litopenaeus vannamei). Working towards organic and/or all plant production diet. 16-19 November, Hermosillo, Sonora, Mexico. pp: 202-213.
22
Drew, M.D.; Racz, V.J.; Gauthier, R. and Thiessen, D.L., 2005. Effect of adding protease to coextruded flax: pea or canola: pea products on nutrient digestibility and growth performance of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Animal Feed Science Technology. Vol. 119, pp: 117-128.
23
Feldman, B.F.; Zinkl, J.G. and Jain, N.C., 2000. Schalm's Veterinary Hematology. 5th ed. Lippincott Williams and Wilkins. pp: 1120-1124.
24
Freitag, M., 2007. Organic acids and salts promote performance and health in animal husbandry. In: Lu¨ cksta¨ dt C, editor. Acidifiers in Animal Nutrition – A Guide for Feed Preservation and Acidification to Promote Animal Performance. 1st ed.: Nottingham University Press, Nottingham, UK. pp: 1-11.
25
Ganguly, S.; Dora, K.C.; Sarkar, S. and Chowdhury, S., 2013. Supplementation of prebiotics in fish feed: a review. Reviews in Fish Biology and Fisheries. Vol. 23, pp: 195-199.
26
Grinde, B.; Lie, O.; Poppe, T. and Salte, R., 1988. Species and individual variation in lysozyme activity in fish of interest in aquaculture. Aquaculture. Vol. 68, pp: 299-304.
27
Hoseinifar, S.H.; Mirvaghefi, A.; Mojazi Amiri, B.; Rostami, H.K. and Merrifield, D.L., 2011. The effects of oligofructose on growth performance, survival and autochthonous intestinal microbiota of beluga (Huso huso) juveniles. Aquaculture Nutrition. Vol. 17, pp: 498-504.
28
Irianto, A. and Austin, B., 2002, Probiotics in aquaculture (Review). Journal of Fish. Diseases. Vol. 25, pp: 633-642.
29
Iwama, G. and Nakanishi, T., 1996. The fish immune system. Academic Press, London. Chapter 3: innate Immunity in fish. pp: 73-114.
30
Jiang, T.T.; Feng, L.; Liu, Y.; Jiang, W.D.; Jiang, J.; LI, S.H.; Tang, L.; Kuang, S.Y. and Zhou, X.Q., 2014. Effects of exogenous xylanase supplementation in plant protein-enriched diets on growth performance, intestinal enzyme activities and microflora of juvenile jian carp (Cyprinus carpio). Aquaculture Nutrition. Vol. 20, pp: 632-645.
31
Kruger, N.J., 1996. The Bradford method for protein quantization. In: Walker, J. M. Ed., the protein protocols Handbook. Vol. 1, Human Press, Totowa, USA. pp: 11-15.
32
Kubulay, A. and Ulukoy, G., 2002. The effects of acute stress on rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Turkish Journal of Zoology. Vol. 26, pp: 249-254.
33
Lie, O.; Evensen, O.; Sorensen, A. and Froysadal, E., 1989. Study on lysozyme activity in some fish species. Disease of Aquatic Organism. Vol. 6, pp:1-5.
34
Lin, S.; Mai, K. and Tan, B., 2007. Effect of exogenous enzyme supplementation in diets on growth and feed utilization in tilapia (Oreochromis niloticus). Aquacul Rese. Vol. 38, pp: 1645-1653.
35
Liu, B.; Xu, L.; Ge, X.; Xie, J.; Xu, P.; Zhou, Q.; Pan, L. and Zhang, Y., 2013. Effects of mannan oligosaccharide on the physiological responses, HSP70 gene expression and disease resistance of Allogynogenetic crucian carp (Carassius auratus gibelio) under Aeromonas hydrophila infection. Fish and shellfish immuno. Vol. 34, pp: 1395-1403.
36
Liu, C.H.; Chiu, C.H.; Wang, S.W. and Cheng, W., 2012. Dietary administration of the probiotic, Bacillus subtilis E20 enhances the growth, innate immune responses, and disease resistance of the grouper, Epinephelus coioides. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 33, pp: 699-706.
37
Magnadottir, B.; Lange, S.; Gudmundsdottir, S.; Bogwald, J. and Dalmo, R.A. 2005. Ontogeny of humoral immune parameters in fish. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 19, pp: 429-439.
38
Mahmoudzadeh, L.; Meshkini, S.; Tukmehchi, A.; Motalebi Moghanjoghi, A.A. and Mahmoudzadeh, M., 2016. Effects of dietary Bacillus subtilis on growth performance and immune responses in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 15, No. 1, pp: 347-359.
39
Marian, M.P., 2004. Growth and immune response of juvenile greasy groupers (Epinephelus tauvina) fed with herbal antibacterial active principle supplemented diets against Vibrio harveyi infections. Aqua. Vol. 237, pp: 9-20.
40
Martinez Álvarez, R.M.; Morales, A.E. and Sanz, A., 2005. Antioxidant defenses in fish: biotic and abiotic factors. Rev Fish Biol. Vol. 15, pp: 75-88.
41
Nayak, S.K.; Swain P. and Mukherjee S.C., 2007. Effect of dietary supplementation of probiotic and vitamin C on the immune response of Indian major carp, Labeo rohita (Ham.). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 23, pp: 892-896.
42
Nayak, S.K., 2010. Probiotics and immunity: A fish perspective. Fish and ShellfishImmunol. Vol. 29, pp: 2-14.
43
Nikoskelainen, S.; Ouwehand, A.C.; Bylund, G.; Salminen, S. and Lilius, E., 2003. Immune enhancement in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) by potential probiotic bacteria (Lactobacillus rhamnosus). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 15, pp: 443-452.
44
Panigrahi, A., Kiron, V., Kobayashi, T., Puangkaew, J., Saoh, S. and Sugita, H., 2004. Immune responses in rainbow trout Oncorhynchus mykiss induced by a potential probiotic bacteria Lactobacillus rhamnosus JCM 1136. Veterinary immunology and immunopathology. Vol. 102, pp: 379-388.
45
Panigrahi, A.; Kiron, V.; Puangkaew, J.; Kobayashi, T.; Satoh, S. and Sugita, H., 2005. The viability of probiotic bacteria as a factor influencing the immune response in rainbow trout Oncorhynchus mykiss. Aquaculture. Vol. 243, pp: 241-254.
46
Pathiratne, A. and Rajapakshe, W., 1998. Hematological changes associated with epizootic ulcerative syndrome in the Asian Cichlid fish, Etroplus suratensis. Asian fisheries science. Vol. 11, pp: 203-211.
47
Pettersson, A., 2005. Extracellular enzyme system utilized by the fungas (Sporotrichum pulverulentum) for breakdown of cellulase. Europian Journal of Biochemistry. Vol. 5, pp: 193- 206.
48
Qinghui, A.; Kangsen, M.; Chunxiao, Z.; Qingyuan, D.; Beiping, T. and Zhiguo, L., 2004. Effect of dietary vitamin C on growth immune response of Japanese seabass, (Lateolabrax japonicas). Aquaculture. Vol. 242, pp: 489-500.
49
Raa, J.; Roestad, G.; Engstad, R.E. and Robertsen, B., 1992. The use of immunostimulants to increase resistance of aquatic organism to microbial infections. In: Shariff IM, Subasin-ghe RP, Arthur JR (eds) Diseases in Asian aquaculture. Health Fish Section, Asian Fisheries Society, Manila. pp: 39-50.
50
Reyes Becerril, M.; Tovar-Ramírez, D.; Ascencio Valle, F.; Civera Cerecedo, R.; Gracia López, V. and Barbosa Solomieu, V., 2008. Effects of dietary live yeast Debaryomyces hansenii on the immune and antioxidant system in juvenile leopard grouper Mycteroperca rosacea exposed to stress. Aquaculture. Vol. 280, No. 1, pp: 39-44.
51
Ricker, W.E., 1979. Growth rates and models. Fish Physiology. Vol. 8, pp: 677-743.
52
Ridha, M.T. and Azad, I.S., 2012. Preliminary evaluation of growth performance and immune response of Nile tilapia Oreochromis niloticus supplemented with two putative probiotic bacteria. Aquaculture Resea. Vol. 43, pp: 843-852.
53
Ringo, E.; Dimitroglou, A.; Hoseinifar, S.H. and Davies SJ., 2014. Prebiotics in finfish: an update. In: Merrifield D, Ringø E, editors. Aquaculture nutrition: gut health, probiotics and prebiotics. Oxford, UK. Wiley Blackwell Publishing.
54
Sakai, M., 1999. Current research status of fish immunostimulants. Aquaculture. Vol. 172, pp: 92-63.
55
Shen, W.Y.; Fu, L.L.; Li, W.F. and Zhu, Y.R., 2010. Effect of dietary supplementation with Bacillus subtilis on the growth, performance, immune response and antioxidant activities of the shrimp (Litopenaeus vannamei). Aquaculture Research. Vol. 41, pp: 1691-1698.
56
Sinha, A.K.; Kumar, V.; Makkar, H.P.S.; De Boeck, G. and Becker, K., 2011. Non-starch polysaccharides and their role in fish nutrition Areview. Food Chemistry. Vol. 127, pp: 1409-1426.
57
Siwicki, A.; Klein, P.; Mornad, M.; Wiczka, W. and Studnicka, M., 1998. Immunostimulatory effects of dimerized lysozyme (KLP - 206) on the non specific defense mechanisms and protection against furunulosis in salmoniels. Veterinary Immunol & Immunopathol. Vol. 61, pp: 369-378.
58
Soltani, M.; Shafiei, S.; Yosefi, P.; Mosavi, S. and Mokhtari, A., 2014. Effect of Montanide™ IMS 1312 VG adjuvant on efficacy of Yersinia ruckeri vaccine in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 37, No. 1, pp: 60-65.
59
Sturkie, P.D., 1995. Avian physiologhy. (4th ed). Springer Verlag, New York. pp: 115-270.
60
Sveinbjornsson, B.; Olsen, R. and Paulsen, S., 1996. Immunocytochemical localization of lysozyme in intestinal eosinophilic granule cells (EGCs) of Atlantic salmon, Salmo salar L. Journal of Fish Disease. Vol. 19, pp: 349-355.
61
Swain, P.; Dash, S.; Sahoo, P.K.; Routray, P.; Sahoo, S.K.; Gupta, S.D.; Meher, P.K. and Sarangi, N., 2006. Non-specific immune parameters of brood Indian major carp Labeo rohita and their seasonal variations. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 22, pp: 38-43.
62
Tacon, A.G.J., 1990. Standard methods for the nutrition and feeding of farmed fish and shrimp Argent Laboratories press. pp: 4-27.
63
Thomas, S.N.; Edwin, L. and George, V.C., 2003. Catching efficiency of gill nets and trammel nets for penaeid prawns. Fisheries Research. Vol. 60, pp: 141-150.
64
Treves Brown, K.M., 2000. Applied fish pharmacology. Springer publication. 309 p.
65
Thrall, M.A., 2004. Veterinary Hematology and Clinical Chemistry. Lippincott Williams and Wilkins, USA. pp: 241:277-288, 402.
66
Verlhac Trichet, V., 2010. Nutrition and immunity: an update. Aquaculture Research. Vol. 41, pp: 356-372.
67
Waley, K. and North, J., 1997. Haemolytic assays for whole complement activity and individual components. In: (A.W. Dodds and R.B. Sim eds.). Complement: A Practical Approach, Vol. 1, Oxford University Press, Oxford, Great Britain. pp: 19-47.
68
Webb, A.; Maughan, M. and Knott, M., 2007. Pest fish profiles (Trichogaster trichopterus Three spot gourami). ACTFR, James Cook University. pp: 5-10.
69
Yano, T., 1996. The nonspecific immune system: Humoral defence. In: Iwama G, Nakanishi T (eds.): The Fish Immune System: Organism, Pathogen and Environment. Academic Press, San Diego. pp: 105-157.
70
Zhou, X.; Tian, Z. and Wang, Y., 2010. Effect of treatment with probiotics as water additives on tilapia (Oreochromis niloticus) growth performance and immune response. FishPhysiology and Biochemistry. Vol. 36, pp: 501-509.
71
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر امواج الکترومغناطیسی تلفن همراه بر شاخص های تولیدمثلی ماهیان آنجل (Pterophyllum scalare) ماده بالغ
پیشرفت تکنولوژی مدرن و استفاده متعدد از آن در محیط زیست به خصوص اکوسیستم های آبی سبب گشته تا علاوه بر انسان سایرجانداران به ویژه ماهی ها همواره متاثر از حاشیههای ناشی از آن ازجمله اثرات امواج الکترومغناطیس منتشره از آن ها باشند. لذا توجه به تاثیرات این امواج بر ماهی ها به عنوان مهم ترین ساکنین محیط های آبی با جنبه های اقتصادی ضروری می باشد. مطالعه حاضر با هدف بررسی تاثیر امواج الکترومغناطیسی تلفن همراه (900 مگاهرتز) بر شاخص های وزنی گناد و کبد، میزان هورمون GTH IIو ساختار بافت تخمدان مولدین ماده آنجل، طی مدت ده روز و در 3 گروهآزمایشی شامل:1- شاهد (بدون دریافت امواج)، 2- روزانه 4 بار و هر بار 30 دقیقه در مجاورت تلفن همراه در حالت روشن و بدون مکالمه و 3- روزانه 4 بار و هر بار 30 دقیقه، در مجاورت تلفن همراه در حالت برقراری تماس، انجام پذیرفت. در انتهای آزمایش، پس از خونگیری از ساقه دمی، سانتریفیوژ خون و جداسازی سرم، سنجش هورمون GTH II با روش رادیو ایمونواسی (RIA) انجام شد. سپس مولدین مورد زیست سنجی و تشریح قرار گرفتند. از تخمدان ها به روش بافت شناسی کلاسیک با رنگ آمیزی هماتوکسیلین-ائوزین، اسلاید بافتی تهیه و از نظرکمی و کیفی با میکروسکوپ بررسی شدند. میانگین شاخص وزنی گناد و کبد و نیز میانگین میزان هورمون GTH II در مولدین تیمار 2 به طور معنی داری بیش تر از گروه شاهد و تیمار 1 بود. هیچ یک از مولدین تیمار2 موفق به تخم ریزی نشدند و میزان آترزیا در بافت تخمدان مولدین تیمار 2 نسبت به سایر گروه ها بیش تر بود. نتایج نشان داد امواج الکترومغناطیسی ناشی از تلفن همراه تغییرات محسوسی را در شاخص های تولیدمثلی ماهی آنجل ماده به وجود آوردند. هرچند که در این زمینه مطالعات گسترده تری در آینده مورد نیاز می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_66246_d010fd028e76c6796ee1a7d3fffedf0b.pdf
2018-03-21
205
212
امواج الکترومغناطیسی
تلفن همراه
هورمون GTH II
آترزیا
ماهی آنجل (Pterophyllum scalare)
محدثه
احمدنژاد
m_ahmadnezhad@yahoo.com
1
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد
صیادبورانی
2
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
سهراب
دژندیان
3
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
همایون
حسین زاده صحافی
h-hosseinzadeh@yahoo.com
4
مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
علی اصغر
خانی پور
aakhanipour@yahoo.com
5
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
علیرضا
ولی پور
valipour40@gmail.com
6
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
عادل
حسینجانی
7
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
حسین
خارا
hossein.khara1974@gmail.com
8
گروه شیلات، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران، صندوق پستی: 1616
AUTHOR
بهارآرا، ج.؛ پریور، ک.؛ عریان، ش. و اشرف، ع. ر.، 1383. اثرات تابش طولانی مدت امواج شبیه سازی شده تلفن های همراه بر غدد تناسلی موش ماده نژادBalb/C . فصلنامه باروری و ناباروری. دوره 5، شماره 3، صفحات 217 تا 226.
1
بهمنی، م.؛ آقاکوچکی، م. و تکریمی نیاراد، م.، 1393. کاربرد میدان های مغناطیسی ثابت بر شاخص های فیزیکی و شیمیایی آب و تاثیر آب مغناطیسی شده بر بیوفیزیولوژی ماهی طلایی Carassius auratus. مجله آبزیان زینتی. سال 1، شماره 2، صفحات 1 تا 10.
2
حمایت خواه جهرمی، و.؛ فتاحی، ا.؛ نظری، م.؛ جوهری، ح.ا. و کارگر، ح.، 1389. بررسی اثر امواج موبایل بر تعداد فولیکول های تخمدان و میزان هورمون های FSH،LH ، استروژن و پروژسترون در موش های صحرایی بالغ. مجله علمی پژوهشی سلول و بافت. جلد 1، شماره1، صفحات 27 تا 34.
3
Baniks, S.; Bandyopadhyay, S. and Ganguly, S.B., 2003. Effects of microwave a brief review. Bioresource Technology. Vol. 87, pp: 155-159.
4
Blazer, V.S., 2002. Histopathological assessment of gonadal tissue in wild fishes. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 26, pp: 85-101.
5
Bortkiewicz, A., 2001. A study on the biological effects of exposure mobile-phone frequency EMF. Medycyna Pracy. Vol. 52, pp: 101-106.
6
Brown Peterson, N.J.; WyanskiFran, D.M.; Saborido Rey, F.; Macewicz, B.J. and Lowerre Barbieri, S.K., 2011. A standardized terminology for describing reproductive development in fishes. Marine and Coastal Fisheries: Dynamics, Management, and Ecosystem Science. Vol. 3, No. 1, pp: 52-70.
7
Degani, G. and Boker, R., 1992 b. Vitellogenesis level and the induction of maturation in the ovary of the blue gourami Trichogaster trichopterus (Anabantidae, Pallas 1770). Journal of Experimental Zoology. Vol. 263, pp: 330-337.
8
Degani, G. and Yehuda, Y., 1996. Effects of diets on reproduction of angelfish, Pterophyllum scalare (Cichlidae). Indian Journal of Fisheries. Vol. 43, No. 2, pp: 121-126.
9
Degani, G.; Boker, R.; Gal, E. and Jackson, K., 1997. Oogenesis and steroid profiles during the reproductive cycle of female angelfish Pterophyllum scalare (Cichlidae). Indian Journal of Fisheries. Vol. 44, No. 1, pp: 1-10.
10
De Seze, R.; Fabbro Peray, P. and Miro, L., 1998. GSM radiocellular telephones do not disturb the secretion of antepituitary hormones in humans. Bioelectromagnetics. Vol. 19, pp: 271-278.
11
Djeridane, Y.; Touitou, Y. and de Seze, R., 2008. Influence of electromagnetic fields emitted by GSM-900 cellular telephones on the circadian patterns of gonadal, adrenal and pituitary hormones in men. Radiation Research. Vol. 169, pp: 337-343.
12
Elebetieha, A. and AL Akhras, M., 2002. Long-term exposure of male and female rat to 40 Hz magnetic field effects on fertility. Bioelectro magnetics. Vol. 23, pp: 168-172.
13
Forgacs, Z.; Somosy, Z. and Kubinyi, G., 2006. Effect of whole-body 1800MHz GSM-like microwave exposure on testicular steroidogenesis and histology in mice. Reproduction Toxicology. Vol. 22, pp: 111-117.
14
Ghaedi, Sh.; Kargar Jahromi, H.; Farzam, M.; Azhdari, S.; Mahmoudi Teimourabad, S. and Bathaee, H., 2013. Effects of Mobile Phone Radiation on the Liver of Immature Rats. Advances in Environmental Biology. Vol. 7, No. 6, pp: 1127-1132.
15
Gill, A.B. and Bartlett, M., 2010. Literature review on the potential effects of electromagnetic fields and subsea noise from marine renewable energy developments on Atlantic salmon, sea trout and European eel. Scottish Natural Heritage Commissioned Report. No. 401.
16
Gul, A.; Celebi, H. and Ufrao, S., 2009. The effects of microwave emitted by cellular phones on ovarian follicles in rats. Archives of Gynecology and Obstetrics. Vol. 280, pp: 729-233.
17
Heath, A.G., 1995. Water Pollution and Fish Physiology. CRC Press, Boca Raton, Fla, USA, 2nd edition.
18
Hinton, D.E.; Baumann, P.C.; Gardner, G.R.; Hawkins, W.E.; Hendricks, J.D.; Murchelano, R.A. and Okihiro, M.S., 1992. Histopathologic biomarkers. In: Biomarkers Biochemical, Physiological and Histological Markers of Anthropogenic Stress, pp: 155-210. Edited by R.J. Huggett, R.A. Kimerle, P.M. Mehrle, Jr., and H.L. Bergman. Lewis Publishers, Chelsea, MI. 347 p.
19
Hjollund, N.H.; Skotte, J.H.; Kolstad, H.A. and Bonde, J.P., 1999. Extremely low frequency magnetic fields and fertility: a follow up study of couples planning first pregnancies. The Danish first pregnancy planner study team. Occupational and Environmental Medicine. Vol. 56, No. 4, pp: 253-255.
20
Hyland, G., 2000. Physics and biology of mobile telephone. Lancet. Vol. 356, pp: 1833-1836.
21
Kumari, K.; Khare, A. and Dange, S., 2014. The Applicability of Oxidative Stress Biomarkers in Assessing Chromium Induced Toxicity in the Fish Labeo rohita. Hindawi Publishing Corporation. BioMed Research International. 11 p. http://dx.doi.org/10.1155/2014/782493
22
Kurita, Y.; Meier, S. and Kjesbu, O.S., 2003. Oocyte growth and fecundity regulation by atresia of Atlantic herring in relation to body condition throughout the maturation cycle. Journal of Sea Research. Vol. 49, pp: 203-219.
23
Lee, W. and Yang, K.L., 2014. Using medaka embryos as a model system to study biological effects of the electromagnetic fields on development and behavior. Ecotoxicology and Environ Safety. Vol. 108, pp: 187-194.
24
Marchand, M.J.; Pieterse, G.M. and Barnhoorn, I.E.J., 2008. Preliminary results on sperm motility and testicular histology of two feral fish species from a currently DDT sprayed area, South Africa. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 24, pp: 423-429.
25
Nagahama, Y., 1987. Endocrine control of oocytes maturation. In: Hormones and Reproduction in Fishes, Amphibians and Reptiles. D.P. Norris and R.E. Jones (Eds.). Plenum Press. New York/London. pp: 171-202.
26
Patino, R. and Thomas, P., 1990 a. Induction of maturation of Atlantic croaker oocytes by 17a, 20(J, 21-trihydroxy-4 pregnen-3-one in vitro: consideration of some biological and experimental variables. Journal of Experimental Zoology. Vol. 225, pp: 97-109.
27
Patino, R. and Thomas, P., 1990 b. Effect of gonadotropin on ovarian intrafollicular processes during the development of oocytes maturational competence in teleosts, the Atlantic croaker; evidence for two distinct stages of gonadotropic control of final oocytes maturation. Biology of Reproduction. Vol. 43, pp: 818-827.
28
Patzner, R.A., 1980. Cyclical changes in weight and fat condition of the liver and their relationship to reproduction in the hagfish. Acta Zoologica. Vol. 61, pp: 157-160.
29
Radichera, N., 2002. Effect of microwave electromagnetic field on skeletal muscle fiber activity. Archives of Physiology and Biochemistry. Vol. 110, No. 3, pp: 203-214.
30
Teh, S.J.; Adams, S.M. and Hinton, D.E., 1997. Histopathological biomarkers in feral freshwater fish populations exposed to different types of contaminant stress. Aquatic Toxicology. Vol. 37, pp: 51-70.
31
Serway, R.A. and Ujewett, J.W., 2004. Physics for scientists and engineers (6th ed). Bilaal Farah ISBNO. Vol. 534, pp: 40842-40847.
32
Singh, S. and Srivastava, A.K., 2015. Variations in Hepatosomatic Index (HSI) and Gonadosomatic Index (GSI) in Fish Heteropneustes fossilis Exposed to Higher Sub-Lethal Concentration to Arsenic and Copper. J of Ecophysiology and Occupational Health. Vol. 15, No. 3-4, pp: 89-93.
33
Slooff, W.; VanKreijl, C.F. and Baars, A.J., 1983. Relative liver weights and xenobiotic-metabolizing enzymes of fish from polluted surface waters in The Netherlands. Aquatic Toxicology. Vol. 4, No. 1, pp: 1-14.
34
Schultz, I.R.; Pratt, W.J., Woodruff, D.L.; Roesijadi, G. and Marshall, K.E., 2010. Effects of electromagnetic fields on fish and invertebrates. Pacific Northwest National Laboratory. Richland, Washington. 26 p.
35
Sun, J.; Wang, W. and Yue, Q., 2016. Review on Microwave Matter Interaction Fundamentals and Efficient Microwave Associated Heating Strategies. Materials, Vol. 9, pp: 231-256.
36
Suvarna, K.; Suvarna, K.; Layton, Ch. and Bancroft, J., 2012. Bancroft's Theory and Practice of Histological Techniques Churchill Living Stone. 654 p.
37
Tyler, C.R. and Sumpter, J.P., 1996. Oocyte growth and development in teleosts. Reviews in Fish Biology and Fisheries. Vol. 6, No. 3, pp: 287-318.
38
Zohar, Y.; Munoz-Cueto, J.A.; Elizur, A. and Kah, O., 2010. Neuroendocrinology of reproduction in teleost fish. Genetic and Comparative Endocrinol. Vol. 165, pp: 438-455.
39
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر هم زمان شدت و دوره نوری بر تکامل فعالیت آنزیم های گوارشی لارو تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus)
در تحقیق حاضر تاثیر دوره های نوری مختلف و شدت نور بر فعالیت آنزیم های گوارشی (پپسین، تریپسین، کموتریپسین، لیپاز، آمیلاز و آلکالین فسفاتاز) لارو تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus ) پس از تخم گشایی تا جذب کامل کیسه زرده مورد ارزیابی قرار گرفت. لاروهای تازه تفریخ شده تاس ماهی ایرانی (قرهبرون) به ترتیب با میانگین وزنی و طولی 0/08±23/19میلی گرم و 0/03±35/11 میلی متر تحت شش تیمار با دوره های مختلف روشنایی و تاریکی L00D:24، D12L:12،D 00L:24 و در سه شدت نور 50، 150 و 300 لوکس به جز تیمار تاریکی کامل که فقط دارای یک شدت نور 10-0 لوکس بود، قرار گرفتند. در طول مدت پروژه لاروها در شرایط پرورشی یکسان (pH، دما، دبی آب و میزان تغذیه) قرار داشتند. نتایج حاصله نشان داد که فعالیت پپسین و تریپسین در روز نهم پس از تخم گشایی (dph) به ترتیب در تیمار 5 با شدت نور 150 لوکس و 12 ساعت روشنایی و تیمار 2 در 24 روشنایی و 150 لوکس بیش ترین میزان را دارا بود و به صورت معنی داری بالاتر از تیمار شاهد بود. فعالیت آنزیم آلکالین فسفاتاز در تیمار 2 و آمیلاز و کموتریپسین به ترتیب در دوره نوری L12 وL 24 و شدت نور 300 لوکس از فعالیت بیش تری برخوردار بود ولی با تیمار شاهد اختلاف معنی داری نداشتند. نتایج این تحقیق نشان داد نور فاکتور مهمی در مراحل اولیه تکامل سیستم گوارش ماهی قره برون به شمار می رود. هم چنین اغلب آنزیم های گوارشی تحت دوره نوری 12 ساعت و شدت نور بین 150 تا 300 لوکس فعالیت بیش تری از خود نشان دادند.
http://www.aejournal.ir/article_65774_c964db18b523841988b932690d14e718.pdf
2018-03-21
213
222
لارو تاس ماهی ایرانی
تکامل
شدت نور
دوره نوری
آنزیم های گوارشی
فرزانه
نوری
yalda.45@gmail.com
1
گروه بیولوژی و تکثیر و پرورش آبزیان، پژوهشکده آرتمیا و آبزی پروری، دانشگاه ارومیه. ارومیه، ایران. صندوق پستی: 57135165
LEAD_AUTHOR
رضوان اله
کاظمی
rezkazemi2000@yahoo.com
2
مؤسسه تحقیقات بینالمللی تاسماهیان دریای خزر، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران. صندوق پستی: 416353464
AUTHOR
الهه
حسن نتاج نیازی
e.niazie@gmail.com
3
گروه بیولوژی و تکثیر و پرورش آبزیان، پژوهشکده آرتمیا و آبزی پروری، دانشگاه ارومیه. ارومیه، ایران. صندوق پستی: 57135165
AUTHOR
کهنه شهری، م. و تاکامی، م.، 1353. تکثیر مصنوعی و پرورش ماهیان خاویاری. انتشارات دانشگاه تهران. 296 صفحه.
1
نوری، ف.؛ بهمنی، م. و پورعلی ح.ر.، 1394. گزارش نهایی طرح تاثیر دوره های نوری بر شاخص های رشد و آنتوژنی آنزیم های گوارشی تاس ماهی شیپ. دانشگاه ارومیه، پژوهشکده آرتمیا و آبزی پروری.
2
یگانه، س.؛ رمضان زاده، ف.؛ جانی خلیلی، خ. و بابایی، س.ص.، 1393. بررسی اثرات طول دوره نوری بر فعالیت برخی آنزیم های گوارشی معده ای و روده ای در لارو و نوجوان قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)، مجله علمی شیلات. سال 23، شماره 2.
3
Agh, N.; Noori, F.; Irani, A.; Van Stappen G. and Sorgeloos, P., 2011. Fine tuning of feeding practices for hatchery produced Persian sturgeon, Acipenser persicus and Beluga sturgeon, Huso huso. Aquaculture Research. pp: 1-10.
4
Asgari, R.; Rafiee, Gh.; Eagderi, S.; Noori, F.; Agh, N.; Poorbagher, H. and Gisbert, E., 2013. Ontogeny of the digestive enzyme activities in hatchery produced Beluga (Huso huso). Aquaculture. pp: 416-417, 33-40.
5
Ahumad-Hernández, R.I.; Alvarez-González, C.A.; Guerrero-Zárate, R.; Martínez-García, R.; Camarillo Coop, S.; Sánchez-Zamora, A.; Gaxiola-Cortes, M.G.; Palomino-Albarrán, I.G.; Tovar-Ramírez, D. and Gisbert, E., 2014. Changes of digestive enzymatic activity on yellowtail snapper during initial ontogeny. International Journal of Biology. Vol. 6, No. 4, pp: 110-118.
6
Alvarez-González, C.A.; Cervantes-Trujano, M.; Tovar Ramírez, D.; Conklin, D.E.; Nolasco, H.; Gisbert, E. and Piedrahita, R., 2006. Development of digestive enzymes in California halibut Paralichthys californicus larvae. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 31, pp: 83-93.
7
Alvarez-González, C.A.; Moyano-Lόpez, F. J.; Civera Cercedo, R.; Carrasco-Chávez, V.; Ortiz-Galindo, J. and Dumas, S., 2008. Development of digestive enzyme activity in larvae of spotted and bass (Palabrax maculatofasciatus). I: Biochemical analysis. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 34, pp: 373-384.
8
Bardi, R.W.; Chapman, F.A. and Barrows, F.T., 1998. Feeding trials with hatchery-produced Gulf of Mexico sturgeon larvae. The Program Fish Culture. Vol. 60, pp: 25-31.
9
Babaei, S.S.; Abedian Kenari, A.; Rajabmohammad Nazari, R. M. and Gisbert, E., 2011. Developmental changes of digestive enzymes in Persian sturgeon during larval ontogeny. Aquaculture. Vol. 318, pp: 138-144
10
Biswas, A.K. and Takeuchi, T., 2003. Effects of photoperiod and feeding interval on food intake and growth of Nile tilapia Oreochromis niloticus L. Fisheries Science. Vol. 69, pp: 1010-1016.
11
Biswas, A.K.; Seoka, M.; Inoue, Y.; Takii, K. and Kumai, H., 2005. Photoperiod influences the growth, food intake, feed efficiency and digestibility of red sea bream (Pagrusmajor). Aquaculture. Vol. 250, pp: 666-673.
12
Bolasina, S.; Perez, A. and Yamashita, Y., 2006. Digestive enzymes activity during ontogenetic development and effect of starvation in Japanese flounder (Paralichthys olivaceus). Aquaculture.Vol. 252, No. 2-4, pp: 503-515.
13
Boeuf, G. and Bail, P.Y., 1999. Does light have an influence on fish growth? Aquaculture. Vol. 177, pp:129-152.
14
Buddington, R.K. and Doroshov, S.I., 1984. Feeding trials with hatchery produced white sturgeon juveniles (Acipenser transmontanus). Aquaculture. Vol. 36, pp: 237-243.
15
Buddington, R.K., 1985. Digestive secretions of lake sturgeon, Acipenser fulvescens, during early development. Journal of Fish Biology. Vol. 26, pp: 715-723.
16
Bradford, M.M., 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein-dye binding. Analytical Biochemistry. Vol. 72, pp: 248-254.
17
Cahu, C. and Zambonino-Infante, J.L., 1997. Is the digestive capacity of marine fish larvae sufficient for a compound diet feeding? Aquacul Intern. Vol. 5, pp: 151-160.
18
Cahu, C.; Rønnestad, I.; Grangier, V. and Zambonino Infante, J.L., 2004. Expression and activities of pancreatic enzymes in developing sea bass larvae in relation to intact and hydrolyzed dietary protein; involvement of cholecystokinin. Aquaculture. Vol. 238, pp: 295-308.
19
Cara, J. B.; Moyano, F. J.; Cardenas, S.; Fernandez-Diaz, C. and Yuffera, M., 2003. Assessment of digestive enzyme activities during larval development of white bream. Journal of Fish Biology. Vol. 63, pp: 48-58.
20
Chen, B.N.; Qin, J.G.; Kumar, M.S.; Hutchinson, W.G. and Clarke, S.M., 2006. Ontogenetic development of digestive enzymes in yellowtail kingfish, Seriola lalandi, larvae. Aquaculture. Vol. 260, pp: 264-271.
21
Chong, A.S.C.; Hashim, R.’ Lee, C.Y. and Ali, B.A., 2002. Partial characterization and activities of proteases form the digestive tract of discus fish. Aquacul. Vol. 203, pp: 321-333.
22
Darias, M.J.; Murray, H.M.; Gallant, J.W.; Douglas, S.E.; Yúfera, M. and Martínez-Rodríguez, G., 2007. Ontogeny of pepsinogen and gastric proton pump expression in red porgy (pagrus pagrus): determination of stomach functionality. Aquaculture. Vol. 270, pp: 369-378.
23
Dabrowski, K.; Kaushik, S.J. and Fauconneau, В., 1985. Rearing of sturgeon (Acipencser baerii) larvea. I. Feeding trial. Aquaculture. Vol. 47, pp: 185-192.
24
Dettlaff, T.A.; Ginsburg, A.S. and Schmalhausen, O.I., 1993. Development of prelarvae. Sturgeon Fishes. Developmental Biology and Aquaculture. Springer-Verlag Ed, Berlin, Germany. pp: 155-221.
25
Kunz, Y.W., 2004. Developmental biology of fishes. Springer, Dordrecht. 636 p.
26
Kuzmina, V.V., 1996. Influence of age on digestive enzymes activity in some freshwater teleost. Aquaculture. Vol. 148, pp: 25-37.
27
Kuzmina, V.V. and Gelman, A.G., 1998. Traits in the development of the digestive function in fish. Journal of Ichthyology. Vol. 39, No. 1, pp: 106-115.
28
El sayed, A.M. and kawanna, M., 2004. Effects of photoperiod on the performance of farmed nile tilapia: I. Growth, feed utilization efficiency and survival of fry and fingerlings. Aquaculture. Vol. 231, pp: 393-402
29
Erlanger, B.; Kokowsky, N. and Cohen, W., 1961. The preparation and properties of two new chromogenic substrates of trypsin. Archive Biochemistry and Biophysics. Vol. 95, pp: 271-278.
30
Iijima, N.; Tanaka, S. and Ota, Y., 1998. Purification and characterization of bile saltactivated lipase from the hepatopancreas of red sea bream, Pagrus major. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 18, pp: 59-69.
31
Furné, M.; García-Gallego, M.; Hidalgo, M.C.; Morales, A.E.; Domezain, A.; Domezain, J. and Sanz, A., 2008. Effect of starvation and refeeding on digestive enzyme activities in sturgeon and trout. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 149, pp: 420-425.
32
Gisbert, E. and Sarasquete, C., 2000. Histochemical identification of the blackbrown pigment granules found in the alimentary canal of Siberian sturgeon (Acipenser baeri) during the lecitotrophic stage. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 22, pp: 349-354.
33
Gisbert, E. and Williot, P., 2002. Advances in the larval rearing of Siberian sturgeon. Journal of Fish Biology. Vol. 60, pp: 1071-1092.
34
Gisbert, E. and Doroshov, S., 2006. Allometric growth in green sturgeon larvae. J.Appl. Ichthyol. Vol. 22, pp: 202-207.
35
Gisbert, E.; Giménez, G.; Fernández, I.; Kotzamanis, Y. and Estévez, A., 2008. Development of digestive enzymes in common dentex Dentex dentex during early ontogeny. Aquaculture. pp: 484-628.
36
Gisbert, E.; Gimenez, G.; Fernández, I.; Kotzamanis, Y. and Estevez, A., 2009. Development of digestive enzymes in common dentex Dentex dentex during early ontogeny. Aquaculture. Vol. 287, pp: 381-387.
37
Hart, P.R.; Hutchinson, W.G.J. and Purser, G., 1996. Effects of photoperiod, temperature and salinity on hatchery reared larvae of the greenback flounder (Rhombosolea tapirina Günter, 1862). Aquaculture. Vol. 144, pp: 303-311.
38
Henning, S.J., 1987. Functional development of the gastrointestinal tract, Physiology of the Gastrointestinal Tract, 2nd edition. Raven Press, New York. pp: 285-300.
39
Jiang, W.D.; Feng, L.; Liu, Y.; Jiang, J. and Zhou, X.Q., 2009. Growth, digestive capacity and intestinal microflora of juvenile Jian carp fed graded levels of dietary inositol. Aquaculture Research. Vol. 40, pp: 955-962.
40
Jiménez-Martínez, L.D.; Alvarez-González, C.A; Tovar Ramírez, D.; Gaxiola, G.; Sanchez-Zamora, A.; Moyano, F.J. and Palomino-Albarrán, I.G., 2012. Digestive enzyme activities during early ontogeny in Common snook. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 38, pp: 441-454.
41
Lazo, J.P.; Holt, G.J. and Arnold, C.R., 2000. Ontogeny of pancreatic enzymes in larval red drum Sciaenops ocellatus. Aquaculture Nutrition. Vol. 6, pp: 183-192.
42
Lazo, J.P.; Mendoza, R.; Holt, G.J.; Aguilera, C. and Arnold, C.R., 2007. Characterization of digestive enzymes during larval development of red drum (Sciaenops ocellatus). Aquaculture. Vol. 265, pp: 194-205.
43
Lauf, M. and Hoffer, R., 1984. Proteolytic enzymes in fish development and the importance of dietary enzymes. Aquaculture. Vol. 37, pp: 335-346.
44
Lojda, Z.; Gossrau, R. and Schiebler, T.H., 1979. Enzyme histochemistry: A Laboratory. Manual. NewYork: Springer.
45
Ma, N.; Cai, L.; U, W.J.; Tan, H. and Cao, J.P., 2005. Exogenous ethylene influences flower opening of cut roses by regulating the genes encoding ethylene biosynthesis enzymes. Science in China, Series C. Vol. 48, pp: 434-444.
46
Munilla-Moran, R.R.; Stark, J.R. and Barbour, A., 1990. The Role of exogenous enzymes in digestion in cultured turbot larvae. Aquaculture. Vol. 88, pp: 117-350.
47
Moyano, F.J.; Diaz, M.; Alarcon, F.J. and Sarasquete, M.C., 1996. Characterization of digestive enzyme activity during larval development of gilthead seabream.
48
Nazemroaya, S.; Yazdanparast, R.; Nematollahi, M.A.; Farahmand, H. and Mirzadeh, Q., 2015. Ontogenetic development of digestive enzymes in Sobaity sea bream Sparidentex hasta larvae under culture condition. Aquaculture. Vol. 448, pp: 545-551.
49
Noori, F.; Van Stappen, G. and Sorgeloos, P., 2011. Preliminary study on the activity of protease enzymes in Persian sturgeon (Acipenser persicus Borodin, 1897) larvae in response to different diets: effects on growth and survival.
50
Pradhan, P.K.; Jena, J.; Mitra, G.; Sood, N. and Gisbert, E., 2013. Ontogeny of digestive enzymes in butter catfish, Ompok bimaculatus, larvae. Aquacult. pp: 372-375, 62-69.
51
Pedersen, B.H.; Nilssen, E.M. and Hjelmeland, K., 1987. Variation in the content of trypsin and trypsinogen in larval herring (Clupea harengus) digesting copepod nauplii. Marine Biology. Vol. 94, pp: 171-181.
52
Reynalte-Tataje, D.; Luz, R.K.; Meurer, S.; Zaniboni Filho, E. and Oliveria Nuῆer, A.P., 2002. Influence of photoperiod on the growth and survival of piranjuba post larvae Brycon orbignyanus (Osteichthyed, Characidae). Acta Scientiarum. Vol.n24, pp: 439-443.
53
Rønnestad, I. and Morais, S., 2007. Digestion. In: Fin, RN, Kapoor, B.G.(Eds), Fish Larval Physiology. Enfield, Science Publishers. pp: 201-262.
54
Rungruangsak, K. and Utne, F., 1981. Effect of different acidified wet feeds on protease activities in the digestive tract and on growth rate of rainbow trout. Aquaculture. Vol. 22, pp: 67-79.
55
Segner, H.; Storch, V.; Reinecke, M.; Kloas, W. and Hanke, W., 1994. The development of functional digestive and metabolic organs in turbot, Scophthalmus maximus. Mar. Biol. Vol. 119, pp: 471-486.
56
Shan, X.; Xiao, Z.; Huang, W. and Dou, S., 2008. Effects of photoperiod on growth, mortality and digestive enzymes in miiuy croaker larvae and juveniles. Aquaculture. Vol. 281, pp: 70-76.
57
Suzer, C.; Kamaci, H.O.; Oban, D.C. and Saka, S., 2007. Digestive enzyme activity of the red porgy (Pagrus pagrus, L.) during larval development under culture conditions. Aquaculture Research. Vol. 38, pp: 1778-1785.
58
Srivastava, A.S.; Kurokawa, T. and Suzuki, T., 2002. mRNA expression of pancreatic enzyme precursors and estimation of protein digestibility in first feeding larvae of the Japanese flounder, Paralichthys olivaceus. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 132A, pp: 629-635.
59
Twining, S.S.; Alexander, P.A.; Huibregste, K. and Glick, D.M., 1983. A pepsinogen from rainbow trout. Comparative Biochemistry Physiology. Vol. 75, pp: 109-112.
60
Trippel, E.A. and Neil, S.R.E., 2003. Effects of photoperiod and light intensity on growth and activity of juvenile haddock. Aquaculture. Vol. 217, pp: 633-645.
61
Verreth, J. and Segner, H., 1995. The impact of development on larval nutrition. In: Lavens, P., Jasper, E., Roelants, I. (Eds.), Larvi' 95, Fish and Shellfish Larviculture Symposium, Europe. Aquacult. Society, Special publication. Ghent, Belgium.
62
Villamizar, N.; Blanco-Vives, B.; Migaud, H.; Davie, A.; Carboni, S. and Sánchez-Bázquez, F.J., 2011. Effects of light during early larval development of some aquacultured teleosts: a review. Aquaculture. Vol. 315, pp: 86-94.
63
Yúfera, M, and Darias MJ., 2007 the onset of exogenous feeding in marine fish larvae. Aquaculture. Vol. 268, pp: 53-63.
64
Worthington, C., 1991. Worthigton Enzyme Manual Related Biochemical Freehold. New Jersey Worthington, C. (1991). Worthigton Enzyme Manual Related Biochemical Freehold. New Jersey.
65
Walford, J. and Lam, T.J., 1993. Development of digestive tract and proteolytic enzyme activity in seabass larvae and juveniles. Aquaculture. Vol. 109, pp: 187-205.
66
Zambonino-Infante, J.L. and Cahu, C., 2001. Ontogeny of the gastrointestinal tract of marine fish larvae. Comp. Biochem. Physiol. Vol. 130, pp: 477-487.
67
Zambonino-Infante, J.; Gisbert, E.; Sarasquete, C.; Navarro, I.; Gutiérrez, J. and Cahu, C.L., 2009. Ontogeny and physiology of the digestive system of marine fish larvae. Feeding and Digestive Functions of Fish. Science Publishers, Inc, Enfield, USA. pp: 277-344.
68
Zambonino-Infante, J.L.and Cahu, C.,1994. Development and response to a diet change of some digestive enzymes in sea bass, Dicentrarchus labrax, larvae. Fish physiology & Biochemistry. Vol. 12, pp: 199-408.
69
Zamani, A.; Hajimoradloo, A.; Madani, R. and Farhangi, M., 2009. Assessment of digestive enzymes activity during the fry development of the endangered Caspian brown trout Salmo caspius. Journal of Fish Biology. Vol. 75, pp: 932-937.
70
Zółtowska, K.; Kolman, R.; Lopienska, E. and Kolman, H., 1999. Activity of digestive enzymes in Siberian sturgeon juveniles (Acipenser baeri Brandt), a preliminary study. Arch. Polish Fisheries. Vol. 7, pp: 201-211.
71
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تاثیر خوراکی کیلکای خام (Clupeonella spp.) بر برخی از شاخص های رشد فیل ماهی (Huso huso Linnaeus, 1758) پرواری
از آن جاکه کیلکا ماهیان (Clupeonella spp.) جزء غذای عمده و طبیعی فیل ماهیان (Huso huso) دریای خزر محسوب می شوند، درتحقیق حاضر تاثیر تغذیه با کیلکا خام بر شاخص های رشد فیل ماهیان پرورشی مورد بررسی قرار گرفت. به این منظور تعداد 120 قطعه ماهی با میانگین وزن 238±1175 گرم در مخازن فایبرگلاس ذخیره سازی شدند. ماهیان به مدت 60 روز و مقادیر 0، 25، 50، 75، 100 درصد کیلکای خام در جیره غذایی در مقایسه با غذای کنسانتره مورد بررسی قرار گرفتند. این مطالعه در طرح کاملاً تصادفی با 3 تکرار انجام شد. در پایان دوره آزمایش، بالاترین عملکرد رشد با توجه به طول، وزن و میانگین بیومس نهایی، میانگین ضریب چاقی (CF)، میزان نرخ رشد ویژه (SGR)، میانگین رشد روزانه (ADG)، میزان افزایش وزن بدن (BW%) و میانگین تولید در تیمار 5 (100 درصد کنسانتره بدون کیلکا) محاسبه گردید که با تیمار 4 (25 درصد کیلکا + 75 درصد کنسانتره) اختلاف معنی داری نداشت (0/05<p). ضریب تبدیل غذایی (FCR) تیمار 4 (0/04±1/07) با تیمار 5 (0/02±0/81) اختلاف معنی داری داشت (0/05>p). برآورد اقتصادی جیره غذایی برای تیمار 4 (25 درصد کیلکا + 75 درصد کنسانتره) 10 درصد پائین تر از تیمار 5 (100 درصد کنسانتره بدون کیلکا) بود. نتایج به دست آمده دراین تحقیق نشان داد که افزودن 25 درصد کیلکا به جیره غذایی فیل ماهیان پرواری بر شاخص های رشد ماهی تاثیر داشته و بنابراین با توجه به فراوانی نسبی و در دسترس بودن، ارزش غذایی و قیمت مناسب کیلکا، استفاده 25 درصد از کیلکا در جیره غذایی روزانه فیل ماهیان در مزارع پرورشی توصیه می گردد.
http://www.aejournal.ir/article_64738_4d09303457af5b8037a538a5a275370e.pdf
2018-03-21
223
230
فیل ماهی (Huso huso)
کیلکا
تغذیه
پرورش
رشد
ابراهیم
بیگتن
ebigtan@gmail.com
1
اداره کل شیلات استان گیلان، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
حبیب
وهاب زاده رودسری
habib.vahabzadeh@gmail.com
2
گروه شیلات، واحدلاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
LEAD_AUTHOR
علی نقی
سرپناه
sarpanah5050@gmail.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، صندوق پستی: 6116-14155
AUTHOR
امیرعلی
مرادی نسب
moradinasab88@yahoo.com
4
باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان، لاهیجان، ایران
AUTHOR
ابراهیمی درچه، ع. و زارع، پ.، 1390. بررسی اثرات سطوح مختلف چربی جیره غذایی بر برخی شاخص های رشد، ضریب تبدیل غذا و بازماندگی بچه فیل ماهی (Huso huso Linnaeus, 1758) پرورشی. نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران، دوره 64، شماره 2، صفحات 93 تا 106.
1
پورعلی، ح.ر.؛ محسنی، م.؛ آق تومان، و. و توکلی، م.، 1382. پرورش بچه فیل ماهیان با درصدهای مختلف غذای کنسانتره فرموله شده. مجله علمی شیلات ایران، ویژه نامه اولین سمپوزیوم ملی ماهیان خاویاری، صفحات 37 تا 48.
2
تاتینا، م.؛ طاعتی، ر.؛ بهمنی، م.؛ سلطانی، م. و قریب خوانی، ب.، 1391. اثر سطوح متفاوت ویتامین های C و E بر شاخص های رشد و بقای ماهی استرلیاد پرورشی (ruthenusAcipenser). مجله علمی شیلات ایران، سال 21، شماره 1، صفحات 1 تا 12.
3
سالک یوسفی، 1379. تغذیه آبزیان پرورشی: ماهیان سردآبی، ماهیان گرمابی و میگو. موسسه تبلیغاتی عاطفه، 318 صفحه.
4
سالنامه آماری شیلات ایران. 1394. آمار صید کیلکا ماهیان در سواحل ایرانی دریای خزر. اداره آمار و انفورماتیک دفتر طرح و توسعه، روابط عمومی و بینالمللی شیلات ایران، تهران، 64 صفحه.
5
کیوان، ا.، 1382. ماهیان خاویاری ایران. انتشارات نقش مهر. 400 صفحه.
6
محسنی، م.؛ پورکاظمی، م.؛ بهمنی، م.؛ پورعلی، ح.ر. و علیزاده. م.، 1379. پرورش گوشتی فیل ماهی در وان فایبر گلاس. پروژه مشترک با سازمان مدیریت و برنامه ریزی استان گیلان، 30 صفحه.
7
محسنی، م.؛ بهمنی، م.؛ پورعلی، ح.؛ کاظمی، ر.؛ آق تومان، و. و پورکاظمی، م.، 1384. تشکیل گله های مولد از مولدین پرورش یافته در کارگاه های پرورش ماهی (فاز اول: بیوتکنیک پرورش گوشتی فیل ماهی در آب شیرین). موسسه تحقیقات شیلات ایران، 135 صفحه.
8
آذری تاکامی، ق.، 1394. تکثیر و پرورش تاس ماهیان (ماهیان خاویاری). انتشارات دانشگاه تهران. 406 صفحه.
9
Applebaum, S.L. and Holt, G.J., 2003. The digestive protease, chymotrypsin, as an indicator of nutritional condition in larval red drum (Sciaenops ocellatus). Marine Biology. Vol. 142, pp: 1159-1167.
10
Belyaeva, V.N.; Kazancheev, E.N. and Raspopov, V.M., 1989. The Caspian Sea: Ichthyofauna and commercial resources. Moscow, Nauka. 236 p.
11
Ebrahimi, E.; Pourreza, J.; Panamariov, S.V.; Kamali, A. and Hosaini, A., 2004. Effects of different levels of protein and fat on growth characters and chemical composition of fingerling Beluga (Huso huso l.). Journal of Science and Technology of Agriculture and Natural Resources. Vol. 8, N. 2, pp: 229-241.
12
Hung, S.S.O.; Storebakken, T.; Cui, Y.; Tian, L. and Einen, O., 1997. High-energy diets for white sturgeon (Acipenser transmontanus) Richardson. Aquaculture nutrition. Vol. 3, pp: 281-286.
13
Hung, S.S.O. and Deng, D.F., 2002. Sturgeon Acipenser spp. In Lim, C. and Webster, C.D. (eds). Nutrient requirements and feeding of finfish for Aquaculture. CAB Inter. Pub. Wallingford, UK. 418 p.
14
Lukyanenko, V.I.; Vasilev, A.S.; Lukyanenko, V.V. and Khabarov, M.V., 1999. On the increasing threat of extermination of the unique Caspian sturgeon populations and the urgent measures required to save them. Journal of Ichthyology. Vol. 15, pp: 99-102.
15
Mohseni, M.; Pourkazemi, M.; Bahmani, M.;Falahatkar, B.; Pourali, H.R. and Salehpour, M.,2006. Effects of feeding rate and frequency on growth performance of yearling great sturgeon, Huso huso. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, pp: 278-282.
16
Ronyai, A.; Csengeri, I. and Varadi, L., 2002. Partial substitution of animal protein with full-fat soybean meal and amino acid supplementation in the diet of Siberian sturgeon (Acipenser baerii). Journal of Applied Ichthyology. Vol. 18, pp: 682-684.
17
Stuart, S.J. and Hung, S.O. 1989. Growth of juvenile white sturgeon (Acipenser transmontanus) fed different proteins. Aquaculture. Vol. 76, pp: 303-316.
18
Yazdani Sadati, M.; Borzoii, A. and Akrami, R., 2016. The effect of dietary dextrin levels on growth performance, body composition and hepatosomatic index in juvenile Siberian sturgeon, Acipenser baerii. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 15, No. 3, p: 1078-1088.
19
Yoshii, K.; Takakuwa, F.; Nguyen, H.; Masumoto, T. and Fukada, H., 2010. Effect of dietary lipid level on growth performance and feed utilization of juvenile kelp grouper Epinephelus bruneus. Fisheries Science. Vol. 76, pp: 139-145.
20
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثرات سطوح مختلف چربی جیره غذایی بر برخی از شاخص های رشد و بازماندگی ماهی قرمز (Carassius auratus)
بررسی سطوح چربی جیره غذایی از اهمیت بالایی برخوردار است، لذا به منظور بررسی اثرات سطوح مختلف چربی بر شاخص های رشد و بازماندگی بچه ماهی قرمز یک آزمایش تغذیه ای به مدت 180 روز بر روی بچه ماهیان با میانگین 3/5 گرمی جهت دستیابی به میزان مطلوب احتیاجات چربی انجام گرفت. 3 سطح مختلف از چربی شامل 9، 12 و 15 درصد با انرژی قابل هضم 3790 تا 3900 کیلوژول بر کیلوگرم در این تحقیق درنظر گرفته شد. نتایج اثر سطوح مختلف چربی جیره های غذایی بیانگر افزایش معنی دار شاخص های وزن نهایی، افزایش وزن بدن، درصد افزایش وزن بدن، نرخ رشد ویژه، شاخص وضعیت و درصد بازماندگی و کاهش معنی دار ضریب تبدیل غذایی را نشان داد (0/05>P). براساس یافته های این تحقیق افزایش میزان چربی تا سطح 15 درصد، بهبود شاخص های مورد بررسی را به همراه داشته است. بالاترین رشد و درصد بازماندگی و بهترین ضریب تبدیل غذایی در سطح چربی 15 درصد به دست آمد. بر این اساس میزان بهینه چربی در جیره غذایی ماهی قرمز در این تحقیق 15 درصد مشخص گردید.
http://www.aejournal.ir/article_65705_37cff84a8404934b145fd95b7fc0f711.pdf
2018-03-21
231
236
پرورش ماهی
تغذیه
چربی
ماهی کاراس طلایی
علی
صادقی
sadeghi.a_shilat@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد رضا
ایمانپور
m.imanpour@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
علی
شعبانی
shabani@gau.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
محمد
مازندرانی
mazandarani57@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
طاهره
باقری
bagheri1360@gmail.com
5
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
ابراهیمی، ع. و زارع، پ.، 1394. بررسی اثرات سطوح مختلف چربی جیره غذایی بر برخی شاخص های رشد، ضریب تبدیل غذایی و بازماندگی بچه فیل ماهی پرورشی. مجله منابع طبیعی ایران. شماره 2. صفحات 93 تا 106.
1
بهزادی، ص.، 1385. مطالعه رشد و نمو جنین ماهی سفید. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی. 120 صفحه.
2
فضلی، ح.، 1386. بررسی سن، رشد، تولیدمثل و تغذیه ماهی سفید رودخانه ای در رودخانه جنوب انگلستان. موسسه تحقیقات شیلات ایران. صفحات 1 تا 8.
3
محمودی، ز؛ نویریان، ح. و فلاحتکار، ب.، 1392. تاثیر سطوح مختلف پروتئین و چربی بر عملکرد رشد بچه ماهی سفید دریای خزر (Rutilus frisii kutum). مجله علمی شیلات ایران. صفحات 101 تا 115.
4
نویریان، ح؛ مصطفی زاده، س. و طلوعی، م.، 1392. بررسی تاثیر سطوح مختلف چربی بر روی معیارهای شاخص رشد بچه ماهی سفید دریای خزر (Rutilus frisii kutum). پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. شماره 68، صفحات61 تا 68.
5
Abdel, M. and Ahmad, M., 2010. Effect of dietary protein regime during the growing period on growth performance of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture Research. Vol. 40, pp: 1532-1537.
6
Astraomova, A., 2006. Improcing of balanced diets for rearing carp in warm water fishes farming. Aquaculture Nutrition. Vol. 20, pp: 455-463.
7
Boujard, T.; Tineau, A.; Cove, D. and Gasset, H., 2014. Regulation of feed intake, growth, and nutrient and energy utilization in European sea bass (Dicentrarchus labrax) fed high fat diets. Aquaculture. Vol. 231, pp: 529-545.
8
Cho, C.Y. and Kaushik, S., 2010. Effects of protein intake on metabolizable and net energy values of fish diets.Marine Science. Vol. 30, pp: 22-29.
9
Dias, J.; Alvarez, M.; Diez, A. and Arzel, G., 2008. Regulation of hepatic lipogenesis by dietary protein/energy in juvenile European seabass (Dicentrarchus labrax). Aquaculture. Vol. 161, pp: 169-186.
10
Du, Z.; Liu, Y.; Wang, G. and Liang, G., 2005. Effect of dietary lipid level on growth, feed composition and body composition by juvenile Grass carp (Ctenopharyngodon idella). Aquaculture Nutrition. Vol. 11, pp: 139-146.
11
Halver, J.E. and Hardy, R., 2011. The effects of dietary retinoic acid on body lipiddepositi on in juvenilered Acipenser persicus. Aquacul Resea. Vol. 193, pp: 271-279.
12
Kaushik, S. and Medale, F., 2007. Energy requirements, utilization and dietary supply to salmonide. Aquaculture. Vol. 124, pp: 81-97.
13
Lus, M.; Durazo, E. and Viana, M., 2010. Effect of dietary lipid levels on performance, body composition and fatty acid profile of juvenile white Seabass (Atractoscion nobilis). Aquaculture. Vol. 289, pp: 101-105.
14
Mimeault, C.; Woodhouse, A. and Rudeau, V., 2005. The human lipid regulator, gemfibrozil bioconentrates and reduces testosterone in the Common carp (Cyprinus carpio). Aquatic Toxicology. Vol. 73, pp: 44-54.
15
Peyghan, R. and Mahjor, A., 2009. Fish pathology 1rd edition, Shahid Chamran University Press. pp: 882-889.
16
Pei, E.; Lei, W.; Zhu, X. and Yang, Y., 2004. Comparative study on the effect of dietary lipid level on growth and feed utilization for Common carp (Cyprinus carpio). Aquaculture Nutrition. Vol. 10, pp: 209-216.
17
Shalaby, M; Wahbl, O. and Saoud, M., 2014. Growth, feed utilization and body composition of white sea bream (Diplodus sargus) juveniles of fered diets with various protein and energy levels. Marine Science. Vol. 22, pp: 3-17.
18
Stuart, J. and Hung, S., 2008. Growth of juvenile white sturgeon (Acipenser transmontanus) fed different proteins. Aquaculture. Vol. 76, pp: 303-316.
19
Subhadra, B.; Lochman, R.; Rawlec, S. and chan,R., 2010. Effect of dietary lipid source on the growth, tissus composition and hematological parameters of largemouth bass (Micropterus salmoides). Aquacul. Vol. 80, pp: 210-222.
20
Webster, C.D. and Lim, C., 2009. Nutrient Requirement and feeding of finfish for Aquaculture. CAB International Publishing. 418 p.
21
Yang, S.D.; Lin, T.S. and Liou, H., 2007. Influence of dietary phosphorous levels on growth, metabolic response and body composition of juvenile carp (Cyprinus carpio). Aquaculture. Vol. 253, pp: 592-601.
22
ORIGINAL_ARTICLE
اثر سطوح مختلف پودر تفاله گوجه فرنگی (Solanum lycopersicum) بر شاخص های زیستی رشد و ترکیبات بیوشیمیایی لاشه ماهی بنی (sharpeyi Mesopotamichthys)
یکی از راه های اقتصادی در تولید پایدار آبزیان پرورشی، استفاده از جیره های غذایی خوب با حداکثر کارایی رشد و سلامت آبزی می باشد. هدف اصلی از این تحقیق بررسی سطوح مختلف پودر تفاله گوجه فرنگی بر عملکرد رشد و ترکیب لاشه بدن ماهی بنی (sharpeyi Mesopotamichthys) می باشد. 4 جیره غذایی با ترکیبات پروتئینی مشابه (گروه شاهد 0%، 10%، 20% و 30% تفاله گوجه فرنگی) تهیه شد. تعداد 240 عدد ماهی بنی انگشت قد با وزن 0/05±8/14 میان 12 آکواریوم با حجم 120 لیتر آب تقسیم شدند. آزمایش 8 هفته به طول انجامید. به علت عدم وارد شدن استرس به ماهیان عملیات زیست سنجی تنها در ابتدا و انتهای دوره آزمایش انجام گردید. نتایج حاصل از این تحقیق حاکی از آن است که استفاده از جیره های غذایی حاوی پودر تفاله گوجه فرنگی اثرات مثبتی بر عملکرد رشد دارد هر چند که تفاوت معنی دار را با گروه شاهد نشان نداد. در مورد ترکیبات بیوشیمیایی بدن تیمارهای 20 و 30 درصد پودر تفاله گوجه فرنگی تفاوت معنی دار را در پروتئین با گروه شاهد نشان می دهند و لذا می توان از آن به عنوان یک ماده جایگزین منابع پروتئینی غذای ماهی به ویژه پروتئین های گیاهی استفاده نمود.
http://www.aejournal.ir/article_67256_bb7ace43ce5ee270c03b28693de254c6.pdf
2018-03-21
237
242
گوجه فرنگی (Solanum lycopersicum)
ماهی بنی(sharpeyi Mesopotamichthys)
رشد
ترکیبات بیوشیمیایی بدن
راحیل
بهرام پور
ghotbeddiny2010@gmail.com
1
گروه شیلات، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
AUTHOR
لاله
رومیانی
l.roomiani@yahoo.com
2
گروه شیلات، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
AUTHOR
نگار
قطب الدین
ghotbeddiny2005@gmail.com
3
گروه شیلات، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
رحیمی پردنجانی، ح.؛ غفاری، م.؛ قرایی، ا.؛ فتح الهی، م. و محمدی، ح.، 1392. تاثیر سطوح مختلف پودر گوجه فرنگی جیره بر شاخص های رشد، کارآیی تغذیه و میزان بقاء در ماهی قزل آلای رنگین کمان. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه زابل. 65 صفحه.
1
رضوی شیرازی، ح.، 1380. تکنولوژی فرآورده های دریایی (علم فرآوری جلد دوم). انتشارات نقش مهر، چاپ اول، تهران، 292 صفحه.
2
ساعدی، م.؛ سجادی، م.؛ حسین زاده صحافی، ه. و عمادی، ح.، 1391. اثر جایگزینی آرد ماهی با آرد سویا در جیره غذایی ماهی پاکوی قرمز. نشریه شیلات دانشگاه تهران، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 65، شماره 1، صفحات ۲۷ تا 37.
3
سلیمی خورشیدی، ن.؛ کیوان شکوه، س.؛ سلاطی، ا.؛ ذاکری، م.؛ محمدی، ن. و طهماسبی کهیانی، ا.، 1391. تاثیر سطوح مختلف نوکلئوتید جیره بر ترکیب لاشه در ماهی قزل آلای رنگین کمان انگشت قد (Oncorhynchusmykiss). اقیانوس شناسی. سال3، شماره 9، صفحات 41 تا46.
4
AOAC (Association of Official Analytical Chemists). 1995. Official Methods of Analysis, 16th edition. Association of Official Analytical Chemists, Arlington, Virginia, USA.
5
Chih, B.; Liu, P.; Chinn, C.; Chalaouni, C.; Komuves, L. G.; Hass, P. E.; Sandoval, W. and Pererson, A. S., 2012. A ciliopathy complex at the transition zone protects the cilia as a privileged membrane domain. Nature Cell Biology. Vol. 14, pp: 61-72.
6
Gatlin, D.M., 2002. Nutrition and fish health, In: Fish Nutrition, (eds) Halver, J.E., and Hardy, R.W., Academic press, San Diego, CA. 760 p.
7
Goda, A.M.; El-Haroun, E.R. and KabirChowdhury, M.A., 2007. Effect of totally or partially replacing fish meal by alternative proein sources on growth of African catfish Clarias gariepinus (Burchell, 1822) reared in concrete tank. Aquaculture resource. Vol. 38, No. 3, pp: 279-287.
8
Haddadian, M.S.Y.; Abu-Reesh, I.M.; Haddadian, F.A.S. and Robinson, R.K., 2001. Utilization of tomato pomace as a substrate for the production of vitamin B12 a preliminary appraisal. Bioresource Technology. Vol. 78, pp: 225-230.
9
Hernandez, M.D.; Martinez, F.J.; Jover, M. and Garcia, B., 2007. Effect of partial replacement of fish meal by soybean meal in sharpsnout seabream (Diplodus puntazzo) diet. Aquaculture. Vol. 263, pp: 159-167.
10
Hoffman, L.; Prinsloo, J. and Rukan, G., 1997. Partial replacement of fish meal with either soybean meal, brewers yeast or tomato meal in the diets of African sharptooth catfish (Clarias gariepinus). Water SA. Vol. 23, No. 2, pp: 181-186.
11
Hung, S.S.O.; Lutes, P.B.; Shqueir, A.A. and Conte, F.S., 1993. Effect of feeding rate and water temperature on growth of juvenile white sturgeon (Acipenser transmontanus). Aquaculture. Vol. 115, pp: 297-303.
12
Jafari, M.; Pirmohammadi, R. and Bampidis, V., 2006. The use of dried tomato pulp in diets of laying hens. International journal of poultry science. Vol. 5, pp: 618-622.
13
Jiri, R., 2000. Influence of astaxanthin on growth rate, condition, and some blood indices of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 190, pp: 27-47.
14
Kanǵ ombe, J.; Likongwe, J.S.; Eda, H. and Mtimuni, J.P., 2007. Effect of varying dietary energy level on feed intake, feed conversion, whole-body composition and growth of Mala-wian tilapia, Oreochromis shiranus- Boulenger. Aquaculture Research. Vol. 38, pp: 373-380.
15
Kashif, U. and Muhammad, A., 2009. Replacement of Fishmeal with Blend of Canola Meal and Corn Gluten Meal, and an Attempt to Find Alternate Source of Milk Fat for Rohu (Labeo rohita). Pakistan Journal of Zoology. Vol. 41, No. 6, pp: 469-474.
16
Keramat Amirkolaie, A.; Dadashi, F.; Ouraji, H. and Jani Khalili, K., 2015. The potential of tomato pomace as a feed ingredient in common carp (Cyprinus carpio L.) diet. Jpurnal of Animal and Feed Sciences. Vol. 24, pp: 153-159.
17
Maniat, M.; Ghotbodin, N. and Rajabzadeh Ghatrami, A., 2014. Effect of garlic on growth performance and body composition of benni fish (Mesopotamichthys sharpeyi). International of Biosciences, Vol. 5, No. 4, pp: 269-277.
18
Medina, I.; Sacchi, R.; Biodi, L.; Aubourg, S.P. and Paolillo, L., 1998. Effect of packing media on the oxidation of canned tuna lipids. Antioxidant effectiveness of extra virgin olive oil. Journal of Agriculture food chemistery. Vol. 46, No. 3, pp: 1150-1157.
19
Persia, M.E.; Parsons, C.M.; Schang, M. and Azcona, J., 2003. Nutritional evaluation of dried tomato seeds. Poultry Science. Vol. 82, No. 1, pp: 141-146.
20
Raky, F.A. and Mikhail, S.K., 2008. Effect of replacement of fish meal protein with boiled full fat soybean seeds with dried algae on growth performance, nutrient utilization and some blood parameters of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Egyptian Journal of Aquatic Biology and Fisheries. Vol. 12, No. 4, pp: 41-61.
21
Saghaee, A.; Ghotbeddin, N. and Rajabzadeh Ghatrami, E., 2015. Evaluation of growth performance and body composition of Oscar fish (Astronotus ocellatus) in response to the consumption of dietary intake of garlic (Allium sativum). Bioflux. Vol. 8, No. 4, pp: 485-490.
22
Sogi, D.S.; Bhatia, R.S.; Garg, K. and Bawa, A.S., 2005. Biological evaluation of tomato waste seed meals and protein concentrate. Journal of Food Engineering. Vol. 71, No. 4, pp: 341-344.
23
Tacon, A.G.J., 1990. Standard Method for Nutritional and feeding of farmed fish and shrimp. Argent laboratories Press. pp: 4-27.
24
Tomecynski, R. and Soska, Z., 1976. Estimation of biological value and chemical composition of seeds and skins of tomatoes. Zeszyty Naukowe Akademii Rolniczo Techniczncj Wolsztynie. Vol. 189, pp: 153-164.
25
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تاثیر اسیدآمینه لیزین برفاکتورهای رشد و بقاء ماهی قرمز(Carassius auratus)
پژوهشی حاضر به منظور بررسی رشد وبقاء ماهی قرمزCarassius auratus با اضافه نمودن اسیدآمینه لیزین به غذای ماهیان درآزمایشگاه انجام شد. به جهت اهمیت تجاری این گونه دربرخی از ماه های سال، اسیدآمینه لیزین به عنوان مکمل به غذا استفاده شد. دراین بررسی4 تیمار با سه تکرار مورد آزمایش قرارگرفت که تیمارشاهد ازجیره غذایی متداول استفاده شد. تیمار1، 2 و 3 هرکدام علاوه برغذای متداول به ترتیب از 1/5، 2 و 2/5 گرم اسیدآمینه لیزین به ازای 1 کیلوگرم وزن بدن تغذیه شدند که در مجموع از 12 آکواریوم و در هر کدام 5 قطعه بچه ماهی با وزن تقریبی 2/9 گرم استفاده شد. نتایج آزمایش حاکی از آن بود که طی دوره آزمایش، بین تیمارها از نظرمیزان رشد اختلاف معنی داری وجود داشت (0/05>P) به گونه ای که هر 3 تیمار مقدار قابل توجهی و با میانگین وزنی0/20±4/38 گرم نسبت به تیمار شاهد با میانگین وزنی 0/01 ± 2/96 گرم افزایش وزن داشته اند و تیمار 3 (2/5 گرم) بهترین نتیجه را درمقایسه با سایر تیمارها به دنبال داشت هم چنین نتایج تحلیل های آماری نشان داد که اسیدآمینه لیزین با مقدار 2/5 گرم درکاهش تلفات بچه ماهیان تاثیر داشته است و باعث بالاترین افزایش درصد بقاء، درصد افزایش وزن، نرخ رشد ویژه، ضریب بازده پروتئین و کاهش ضریب تبدیل غذایی شده است (0/05>P). درنتیجه می توان بیان داشت که لیزین 2/5 گرم باعث بالاترین میزان رشد و بازماندگی ماهی می شود.
http://www.aejournal.ir/article_67287_75d105f93731b26fe5e6e2b03ce50396.pdf
2018-03-21
243
248
اسیدامینه لیزین
رشد
بقاء
ماهی قرمز
Carassius auratus
هدی
حق پناه
haghpanah.hoda90sh@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاداسلامی، بندرعباس، ایران، صندوق پستی: 1311/79159
AUTHOR
مازیار
یحیوی
maziar_yahyavi@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاداسلامی، بندرعباس، ایران، صندوق پستی: 1311/79159
LEAD_AUTHOR
دلارام
نخبه زارع
dalaram.zare@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاداسلامی، بندرعباس، ایران، صندوق پستی: 1311/79159
AUTHOR
ارجینی، م.، 1387. راهنمای گلدفیش (تکثیر و پرورش، تغذیه و بیماری ها). انتشارات برهمند. تهران. 127 صفحه.
1
اشیری، ح.، 1390. بررسی اثر اسیدآمینه لیزین بر رشد ماهی قزل آلای رنگین کمان. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس. 78 صفحه.
2
اعظمی، م.، 1388 . اطلس ماهیان آکواریومی آب شیرین. چاپ اول. انتشارات مرز دانش. تهران.
3
سالکی یوسفی، م.، 1375. تغذیه آبزیان پرورشی. انتشارات دانشگاه تهران. 67 صفحه.
4
ستاری، م.، 1382. ماهی شناسی 2 (سیستماتیک). انتشارات حق شناس. تهران. جلد 2. 197 صفحه.
5
عمادی، ح.، 1380. ماهیان آکواریومی آب شیرین. انتشارات دانشگاه تهران. 83 صفحه.
6
FAO. 2014. The State of World Fisheries and Aquaculture. Rome. 223 p.
7
Goddard, S., 1996. Feed Management in Intensive Aquaculture. Chapman & Hall Book Publ. New York. 189 p.
8
Hosseini, S.M., 2013. Effects of dietary free L-Lysine on growth performance and muscle composition of Beluga Huso huso juveniles. International Journal of Aquatic Biology. Vol. 1, No. 2, pp: 42-47.
9
Imtiaz, A., 2004. Dietary lysine of reqiuirment of fingerling indian major carp, Cirrihius margala (Hamilton), Elsevier. Aquaculture. Vol. 235, pp: 499-511.
10
J.M.CAO, M., 2011. A study on dietary L-Lysine requirement of juvenile yellow catfish Pelteoogrus fulvidraco. Aquaculture nutrition. Vol. 18, No. 1, pp: 35-45.
11
Kasumyan, A.O., 2002. Taste preference in fish. Journal of Ichthyology. Vol. 41, pp: 88-128.
12
Kaushik, S.J., 1995. Nutrient requirements, supply and utilization in the context of carp culture. Aquaculture. Vol. 129, No. 1-4, pp: 225-241.
13
Kikuchi, K., 1999. Use of defatted soybean meal as a substitute for fish meal in diets of Japanese flounder (Paralichthys olivaceus). Aquaculture. Vol. 179, pp: 1-3.
14
Menghong, H.U., 2008. Replacement of fish meal by rendered animal protein ingredients with lysine and methionine supplementation to practical diets for gibel carp, Carassius auratus gibelio. Elsevier. Aquaculture. Vol. 257, pp: 260-265.
15
Nasim Khan, M.; Parveen, M.; Rab, A.; Afzal, M.; Sahar, L.; Ramezan Ali, M. and Naqvi, S.M.H.M., 2003. Effect of replacement of fish meal by soybean and sunflower meal in the diet of (Cyprinus carpio) fingerling. Pakistan Journal of Biological Science. Vol. 6, pp: 601-604.
16
Nguyen, N.; Davis, D.A. and Saoud, P., 2009. Evaluation of alternative protein sources to replace fish meal in practical diets for juvenile Tilapia, Oreochromis spp. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 40, pp: 113-121.
17
Sodagar, M., 2008. the effect of Aspartic amino acid & Alanine as catchy food on survival and development of Bloga fish. Agricultural Sciences & natural resources. Special letter of natural resources. pp: 44-53.
18
Tacon, A.G.J.; Hasan, M.R. and Subasinghe, M., 2006. Use of fishery resource as feed inputs to aquaculture development: Trends and policy implications.FAO Fisheries Circular No, 1018. FAO, Rome. 99 p.
19
Zongjia, J.Ch., 2003. Effects of lysine supplementation in plant protein-based diets on the performance of rainbow trout and apparent digestibility coefficients of nutrients. Aquaculture. Vol. 215, No. 1-4, pp: 255-265.
20
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی توان آنتی اکسیدانی لاکتوباسیلوس پلانتاروم (Lactobacillus plantarum) ریزپوشانی شده با آلژینات/کیتوزان در فیل ماهی جوان Huso huso
استفاده از پروبیوتیک ها در آبزی پروری به دلیل اثرات مفید در سلامت ماهی رشد فزاینده ای داشته است. یکی از مشکلات اصلی استفاده از پروبیوتیک ها غیرفعال شدن آن ها در شرایط معدی – روده ای ماهی است، محافظت پروبیوتیک ها با پوشش های فیزیکی توان پروبیوتیکی آن ها را بهبود می بخشد، لذا در این تحقیق اثر ریزپوشانی باکتری پروبیوتیکی لاکتوباسیلوس پلانتاروم (Lactobacillus plantarum) با نانوذرات آلژینات/کیتوزان بر ویژگی های پروبیوتیکی آن در شرایط برونتنی (Invitro) و نیز اثرات پروبیوتیکی آن در فیل ماهی جوان (Huso huso) ارزیابی شد. ابتدا اثر ریزپوشانی باکتری بر ویژگی های پروبیوتیکی باکتری در شرایط برونتنی شامل: تحمل pH، تحمل صفرا، زنده مانی در شرایط مشابه معدی- روده ای بررسی شد، سپس اثر پروبیوتیک در فیل ماهی جوان مورد ارزیابی قرار گرفت. بدین منظور تعداد 480 قطعه فیل ماهی با میانگین وزنی 2/8±27/2 گرم به چهار تیمار در سه تکرار به صورت زیر تقسیم شدند: تیمار 1 T با خوراک حاوی آلژینات/کیتوزان بدون پروبیوتیک، 2 T با خوراک حاوی پروبیوتیک ریزپوشانی شده با آلژینات/کیتوزان، 3 T با خوراک حاوی پروبیوتیک بدون پوشش و گروه شاهد با خوراک پایه تغذیه شدند. ماهیان به مدت 60 روز با جیره های آزمایشی تغذیه شدند. پس از اتمام دوره آزمایش، تیمارها به مدت 15 روز با غذای فاقد پروبیوتیک غذادهی شدند. نمونه گیری از ماهیان در روزهای 30، 60 و 75 تحقیق انجام گرفت و آنزیم های اکسیداتیو و آنزیم های کبدی در روزهای 30، 60، 75 مورد بررسی قرار گرفتند. نتایج مرحله اول تحقیق نشان داد بیش ترین میزان پراکسید دیسموتازو گلوتاتیون پراکسیداز در تیمار تغذیه شده با آلژینات/کیتوزان و پلانتاروم ریزپوشانی شده در روزهای 30 و 60، بیش ترین میزان فعالیت مالون دیآلدئید در تیمار تغذیه شده با پلانتاروم ریزپوشانی شده در روز 30 مشاهده شد و بیش ترین میزان فعالیت کاتلاز در تیمار تغذیه شده با پلانتاروم در روز 30 مشاهده شد. به نظر می رسد ریزپوشانی باکتری با نانوذرات کیتوزان/آلژینات کارایی پروبیوتیکی باکتری لاکتوباسیلوس پلانتاروم را بهبود بخشید (0/05>P) و توانسته است عملکرد مثبت پروبیوتیک را بهبود بخشد.
http://www.aejournal.ir/article_67296_8398573f40816695e9e97b2b243ed366.pdf
2018-03-21
249
256
لاکتوباسیلوس پلانتاروم
نانوذرات کیتوزان/آلژینات
آنتی اکسیدان
فیل ماهی
سراج
بیتا
bitaf79@gmail.com
1
دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
LEAD_AUTHOR
تکاور
محمدیان
t.mohammadian@scu.ac.ir
2
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
رسول
ناصری پورتکلو
rasulnaseri1356@gmail.com
3
دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
AUTHOR
سالنامه آماری سازمان شیلات ایران. 1392. سازمان شیلات ایران، معاونت برنامه ریزی و توسعه مدیریت، دفتر برنامه و بودجه.
1
محمدیان، ت.، 1392. ارزیابی توان پروبیوتیکی و تحریک کنندگی ایمنی برخی لاکتوباسیلوس های جدا شده از روده ماهی شیربت Barbus grypus . پایان نامه دوره دکترای تخصصی، دانشگاه شهید چمران اهواز، دانشکده دامپژشکی. 184صفحه.
2
Ai, Q.; Xu, H.; Mai, K.; Xu, W.; Wang, J. and Zhang, W., 2011. Effects of dietary supplementation of Bacillus subtilis and fructooligosccharide on growth performance, survival, non-specific immune response and disease resistance of juvenile Large Yellow Croaker, Larimichthys crocea. Aquaculture. Vol. 317, pp: 155-161.
3
Arıg, N.; Suzer, C.; Gokvardar, A.; Basaran, F.; Coban, D.; Yildirim, S.H.; FIrat, K. and Saka, S., 2013. Effects of probiotic (Bacillus sp.) supplementation during larval development of Gilthead Sea bream (Sparus aurata, L.). Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 13, No. 3, pp: 19-25.
4
Ellman, G.l., 1959. Tissue sulfhydryl groups. Archive of Biochemistry and Biophysics. Vol. 82, pp: 70-77.
5
FAO. 2010. The State of World Fisheries and Aquaculture. Rome. 180 p.
6
Fuller, R., 1989. Probiotics in man and animals. J. Appl. Bacteriol. Vol. 66, pp: 365-378.
7
Halliwell, B. and Gutteridge, J.M.C., 1999. Free radicals in biology and medicine. 3 rd edn. New York: Oxford University Press, Inc.
8
Hartanti, A.W., 2010. Evaluation of antidiarrheal activity of Lactobacillus isolates from breast milk. Bogor: Bogor Agricultural University, MSc thesis.
9
Hasting, B.E. and Gascoyne, S.C., 1992. Trace mineral levels in guanaco. Research in Veterinary Science. Vol. 131, pp: 14-15.
10
Huiyi, S.; Weiting, Y.; Meng, G; Xiudong, L. and Xiaojun, M., 2013. Microencapsulated probiotics using emulsification technique coupled with internal or external gelation process. Carbohydrate Polymers. Vol. 96, pp: 181-189.
11
Irianto, A. and Austin, B., 2002. Probiotics in aquaculture. Journal of Fish Diseases. Vol. 25, pp: 633-642.
12
Koroluk, M.; Ivanova, L.; Majorova, I. and Tokarev, V., 1988. Method for determination ofcatalase activity Laboratory Work Laboratornoe Delo, in, in Russian. Vol. 11, pp: 16-19.
13
Kullisaar, T.; Songisepp, E.; Aunapuu, M.; Kilk, K.; Arend, A. and Mikelsaar, M., 2003. Antioxidative probiotic fermented goats' milk decreases oxidative stress- mediated atherogenicity in human subjects. Br J Nutr. Vol. 90, No. 2, pp: 449-456.
14
Mann, T. and Keilin, D., 1938. Haemocuprein, copper-protein compounds of blood and liver in mammals. Proceedings of the Royal Society of London B, 126: 303-315.
15
McCord, J.M. and Fridovich, I., 1969. Superoxide dismutase, an enzymatic function for erythrocuprein. The Journal of Biological Chemistry. Vol. 244, pp: 6049-6055.
16
Martı´nez-Alvarez, R.M.; Morales, A.E. and Sanz, A., 2005. Antioxidantdefenses in fish: biotic and abiotic factors. Review Fish Biology &Fisheries. Vol. 15, pp: 75-88.
17
Merrifield, D. and Ringo, E., 2014. Aquaculture nutrition: Gut health, probiotics and prebiotics. Oxford, UK: Wiley Blackwell. pp: 401-418.
18
Mikelsaar, M. and Zilmer, M., 2009. Lactobacillus fermentum ME 3 an antimicrobial & antioxidative probiotic. Microbial Ecology in Health and Disease. Vol. 21, pp: 1-27.
19
Mona, M.H.; Rizk, E.S.T.; Salama, W.M. and Younis, M.L., 2015. Efficacy of probiotics, prebiotics, and immunostimulant on growth performance & immunological parameters of Procambarus clarkii juveniles. The Journal of Basic & Applied Zoology. Vol. 69, pp: 17-25.
20
Moss, D.W. and Henderson, A.R., 1999. Clinical enzymology. In: Burtis, C.A. and Ashwood, E.R., Editors. Tietz Textbook of Clinical Chemistry. 3rd edition. Philadelphia: W.B Saunders Company. pp: 617-721.
21
Nabas, Z.; Haddadin, M.; Haddain, J. and Nazer, I.K., 2014. Chemical Composition of Royal Jelly and Effects of Synbiotic with Two Different Locally Isolated Probiotic Strains on Antioxidant Activities. Pol. J. Food Nutr. Sci. Vol. 64, No. 3, pp: 171-180.
22
Peran, L.; Camuesco, D.; Comalada, M.; Nieto, A.; Concha, A. and Adrio, J.L., 2009. Lactobacillus fermentum, a probiotic capable to release glutathione, prevents colonic inflammation in the meta-analysis. East Mediterr Health J. Vol. 15, No. 3, pp: 591-599.
23
Rahayu, W.P.; Astawan, M.; Wresdiyati, T. and Mariska, S., 2013. Antidiarrheal and antioxidative capability of synbiotic yogurt to the rats. International Food Research Journal. Vol. 20, No. 2, pp: 703-709.
24
Rahman, M.M.; Islam, M.N.; Islam, M.W. and Kabir, S.M.L., 2004. Kamruzzaman SM. Effects of probiotics supplementation on growth performance and certain haemato- biochemical parameters in broiler chickens. Bangladesh J Vet Med. Vol. 2, No. 1, pp: 39-43.
25
Reyes-Becerril, M.; Salinas, I.; Cuesta, A.; Meseguer, J.; Tovar-Ramirez, D.; Ascencio-Valle, F. and Esteban, M.A., 2008. Oral delivery of live yeast Debaryomyces hansenii modulates the main innate immune parameters and the expression of immune-relevant genes in the gilthead seabream (Sparus aurata L.). Fish & Shellfish Immunology. Vol. 25, pp: 731-739.
26
Scoll, P.F.; McCoy, L. and Kensler, T.W., 2009. Groopman JD. Quantitative analysis and chronic dosimetry of the aflatoxin B1 plasma albumin adduct Lys-AFB1 in rats by isotope dilution mass spectrometry. Chem Res Toxicol. Vol. 19, No. 1, pp: 44-49.
27
Weifen, L.; Xiaoping, Z.; Wenhui, S.; Bin, D.; Quan, L.; Luoqin, F.; Jiajia, Z.; Yue, W. and Dongyou, Y., 2012. Effects of Bacillus preparations on immunity and antioxidant activities in grass carp (Ctenopharyngodon idella). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 38, pp: 1585-1592.
28
Zhang, C.N.; Li, X.F.; Xu, W.N.; Jiang, G.Z.; Lu, K.L.; Wang, L.N. and Liu, W.B., 2013. Combined effects of dietary fructooligosaccharide and (Bacillus licheniformis) on innate immunity, antioxidant capability and disease resistance of triangular bream (Megalobrama terminalis). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 35, pp: 1380-1386.
29
Ziaei, H.; Karimi Torshizi, M.A.; Bashtani, M.; naeemipour, H. and Zeinali, A., 2009. Efficiency evaluation of antibiotic growth promoter's alternatives on immune response and some blood metabolites in broiler chickens. J Agri Sci Nat Resour. Vol. 16, No. 2, pp: 1-13.
30
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر غلظت های تحت کشنده دیازینون بر بافت تخمدان در ماهی گورخری (Danio rerio)
سم دیازینون، یکی از سمومی است که بهعنوان آفت کش در باغات و زمین های کشاورزی کشور به ویژه در منطقه استان گلستان استفاده می گردد. با این که بوم سازگانهای آبی محل و هدف استفاده این سموم نیستند، اما مطالعات پایشی شواهدی از حضور آنها و متابولیت های آنها را در محیط های آبی ب هویژه آب های سطحی را نشان می دهد. اثرات دوزهای تحت کشنده سم دیازینون تجاری بر آسیب بافت تخمدان ماهی گورخری نابالغ در مواجهه 30 روزه مورد بررسی قرار گرفت. برای این منظور 240 ماهی ماده با میانگین وزنی 0/05±0/2 در 3 تیمار تحت کشنده ۵، ۱۰ و ۲۰ درصد از 50 LC سم دیازینون به ترتیب 0/8، 1/6، و 3/2 میلی گرم بر لیتر و تیمار شاهد قرار گرفتند. در پایان دوره، نمونه برداری از بافت گناد ماهیان انجام و مقاطع بافتی تهیه شد. نتایج نشان داد که در گروه شاهد، بافت تخمدان طبیعی و عمده اووسیت ها در ابتدا و انتهای مرحله چهارم رسیدگی جنسی بودند. در تیمار0/8 میلی گرم بر لیتر اووسیت ها درمرحله سوم و انتهای مرحله سوم رسیدگی جنسی بوده و تعدادی اووسیت در مرحله دوم مشاهده شد. در تیمار 1/6 و 3/2 میلی گرم بر لیتر، رشد ناچیز تخمدان مشاهده و اووسیت ها عمدتاً در مرحله دوم رسیدگی جنسی قرار داشتند. در این تیمارها هایپرپلازیا در لایه گرانولوزا و فولیکولهای آترتیک مشاهده شد. این روند رسیدگی نشان دهنده کاهش رشد اووسیت با افزایش دوز سم می باشد. اندازه تخمدان در تیمارهای مختلف به ویژه با دوز بالا (3/2 میلی گرم بر لیتر) کاهش چشمگیری نسبت به گروه شاهد نشان داد.
http://www.aejournal.ir/article_67305_8217e513c1a16854252b443bcb18247e.pdf
2018-03-21
257
262
دیازینون
رسیدگی جنسی
ماهی گورخری
معصومه
درویشی
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
رقیه
صفری
roghi_safari@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
علی
شعبانی
ali@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
سید حسین
حسینی فر
hoseinifar@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
بنایی، م.؛ میرواقفی، ع.ر.؛ احمدی، ک. و عاشوری، ر.، ۱۳۸۸. تاثیر غلظت تحت کشنده دیازینون بر تغییرات هیستوپاتولوژیک بیضه و تخمدان ماهی کپورمعمولی (Cyprinuscarpio). مجله بیولوژی دریا. دوره ۱. شماره ۲. صفحات ۱۴ تا ۲۶.
1
Abadin, H.; Todd, D.; Wohlers, D. and Hard, C.M., 2009. Priority data needs for Diazinon. Syracuse Research Corporation. 75 p.
2
Anbarkeh, F.R.; Nikravesh, M.R.; Jalali, M.; Sadeghnia, H.R.; Sargazi, Z. and Mohammdzadeh, L., 2014. Single dose effect of diazinon on biochemical parameters in testis tissue of adult rats and the protective effect of vitamin E. Iranian journal of reproductive medicine. Vol. 12, 731 p.
3
Bagheri, F., 2007. Study of pesticide residues (Diazinon, Azinphosmethyl) in the rivers of Golestan province (GorganRoud and Gharehsou). M.Sc. Thesis, Tehran University of Medical Science, Tehran, Iran.
4
Dutta, H.M. and Arends, D., 2003. Effects of endosulfan on brain acetylcholinesterase activity in juvenile bluegill sunfish. Environmental Research. Vol. 91, pp: 157-162.
5
Dutta, H.M. and Maxwell, L., 2003. Histological examination of sublethal effects of Diazinon on ovary of Bluegill, Lepomis macrochirus. Environmental Pollution. Vol. 121, pp: 95-102.
6
Dutta, H.M.; Nath, A.; Adhikari, S.; Roy, P.K.; Singh, N.K. and DattaMunshi, J.S., 1992. Sublethalmalathion induced changes in the ovary of an air-breathing fish, Heteropneustesfossilis: a histological study. Hydrobiologia. Vol. 29, pp: 215-218.
7
Eisler, R., 1986. Diazinon hazards to fish, wildlife, and invertebrates: A Synoptic review. Fish and Wildlife Service.
8
Fanta, E.; Rios, F.S.; Romao, S.; Vianna, A. and Freiberger, S., 2003. Histopathology of the fish Corydoras paleatus contaminated with sublethal levels of organophosphorus in water and food. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 54, pp: 119-130.
9
Fattahi, E.; Jorsaraei, S.G.A.; Parivar, K. and Moghaddamnia, A.A., 2010. The effects of a single dosage of Diazinon and Hinosan on the structure of testis tissue and sexual hormones in Mice. Yakhteh Medical Journal. Vol. 12, pp: 405-410.
10
Fattahi, E.; Parivar, K. and Jorsaraei, S.G.A., 2009. The effects of diazinon on testosterone, FSH and LH levels and testicular tissue in mice. International Journal of Reproductive BioMedicine. Vol. 7, pp: 59-64.
11
Fernandes, A.; Ferreira-Cadoso, J.V.; Garcia-Santos, S.; Monteiro, S.M.; Carrola, J.; Matos, P. and Fontainhas Fernandes, A., 2007. Histopathological changes in liver and gill epithelium of Nile tilapia (Oreochromis niloticus), exposed to waterborne copper. Pesquisa Veterinaria Brasileria. Vol. 27, No. 3, pp:103-109.
12
Fulton, M.H. and Key, P.B., 2001. Acetylcholinesterase inhibition in estuarine fish and invertebrates as an indicator of organophosphorus insecticide exposure and effects. Environmental Toxicology and Chemistry. Vol. 20, pp: 37-45.
13
Groman, D.B., 1982. Histology of the Striped Bass. American FisheriesSociety: Department of Pathobiology.
14
Johari, H.; Shariati, M.; Abbasi, S.; Sharifi, E. and Askari, H.R., 2010. The effects of diazinon on pituitary gonad axis & ovarian histological changes in rats. International Journal of Reproductive BioMedicine. Vol. 8, pp: 125-130.
15
Koc, N.D.; Muslu, M.N.; Kayhan, F.E. and Colak, S., 2009. Histopathological changes in ovaries of zebrafish (Danio rerio) following administration of deltamethrin. Fresenius Environmental Bulletin. Vol. 18, pp: 1872-1878.
16
Kuivila, K.M. and Foe, C.G., 1995. Concentrations, transport and biological effects of dormant spray pesticides in the San Francisco Estuary California. Environmental Toxicology and Chemistry. Vol. 14, pp: 1141-1150.
17
Kwon, B.; Ha, N.; Jung, J.; Kim, P.G.; Kho, Y.; Choi, K. and Ji, K., 2016. Effects of Barium Chloride Exposure on Hormones and Genes of the Hypothalamic–Pituitary–Gonad Axis, and Reproduction of Zebrafish (Danio rerio). Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 96, pp: 341- 346.
18
Kwon, B.; Shin, H.; Moon, H.B.; Ji, K. and Kim, K.T., 2016. Effects of tris (2-butoxyethyl) phosphate exposure on endocrine systems and reproduction of zebrafish (Daniorerio). Environmental Pollution. Vol. 214, pp: 568-574.
19
Maliji, G.; Jorsaraei, S.; Zabihi, E.; Fattahi, E.; Rezaie, E. and Faraji, A.S., 2014. Diazinon alters sex hormones, Interferon-gamma, Interleukin-4 and 10 in male Wistar rats. Journal of Gorgan University of Medical Sciences. Vol. 16.
20
Maxwell, L.B. and Dutta, H.M., 2005. Diazinon-induced endocrine disruption in bluegill sunfish, Lepomis macrochirus. Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 60, pp: 21-27.
21
Nouri, J.; Arjmandi, R. and Bayat, H., 2000. Ecological investigation of application of pesticides in rice fields. Iran Journal Public Health. Vol. 29, pp: 137-146.
22
Pesando, D.; Huitorel, P.; Dolcini, V.; Angelini, C.; Guidetti, P. and Falugi, C., 2003. Biological targets of neurotoxic pesticides analysed by alteration of developmental events in the Mediterranean Sea urchin, Paracentrotusl ividus. Marine environmental research. Vol. 55, pp: 39-57.
23
Ramana, Y.V.; Pandey, A.K. and Singh, S., 1992. Dimethoate toxicity to gestational embryonic ovary of a live bearing fish, Lebistes reticulates. Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 48, pp: 907-913.
24
Santos, H.B.; Sato, Y.; Moro, L.; Bazzoli, N. and Rizzo, E., 2008. Relationship among follicular apoptosis, integrin β1 and collagen type IV during early ovarian regression in the teleost Prochilodus argenteus after induced spawning. Cell and tissue research. Vol. 332, pp: 159-170.
25
Sapozhnikova, Y.; Bawardi, O. and Schlenk, D., 2004. Pesticides and PCBs in sediments and fishfrom the Salton Sea, California, USA. Chemosphere. Vol. 55, pp: 797-809.
26
Shah Muhammad, D. and Iqbal, M., 2010. Diazinon induced oxidative stress and renal dysfunction in rats. Food and chemical toxicology. Vol. 48, pp: 3345-3353.
27
Sukumar, A. and Karpagaganapathy, P.R., 1992. Pesticide-Induced atresiain ovary of a freshwater fish, Colisalalia (Hamilton-Buchanan). Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 48, pp: 457-462.
28
Van Der Geest, H.G.; Stuijfzand, S.C.; Krak, M.H.S. and Admiral, W., 1997. Impact of diazinon calamity in 1996 on the aquatic macroinvertebrates in the river Mesue. The Netherlands Journal of Aquatic Ecology. Vol. 30, pp: 327-330.
29
Wendelaar- Bonga, S.E., 1997. The stress response in fish. Physiological reviews. Vol. 77, pp: 591-625.
30
Yilmaz, N.; Yilmaz, M. and Altuntas, I., 2012. Diazinon-induced brain toxicity and protection by vitamins E plus C. Toxicology and industrial health. Vol. 28, pp: 51-57.
31
Yu, L.; Liu, C.; Chen, Q. and Zhou, B., 2014. Endocrine disruption and reproduction impairment in zebrafish after long‐term exposure to DE‐71. Environmental toxicology and chemistry. Vol. 33, pp: 1354-1362.
32
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی وضعیت صید انتخابی ترال به روش کاور در آب های چابهار
برای شناخت میزان انتخاب پذیری تور ترال، مطالعه ای به روش کاور در خرداد ماه 1395 در صیدگاه های چابهار، کنارک و پزم انجام شد. تعداد 1876 ماهی از ایستگاه های مورد مطالعه شامل 23 گونه متعلق به 15 خانواده صید و شناسایی شدند که در این میان یال اسبی (Trichiurus lepturus) با 63% بیش ترین تعداد و سومان (Epinephelus areolatus)، سپرماهی برقدار ایرانی (Torpedo sinuspersici)، هامور معمولی (Epinephelus coioides)، سرخوی خط طلایی (Pristipomoides multidens) و گلو (Netuma thalassina) با 0/05 درصد کم ترین مقدار را شامل می شدند. میزان صید به ازای واحد تلاش در این مطالعه بین 161/2 تا 637 کیلوگرم بر ساعت متغیر بود. اما میانگین میزان صید به ازای واحد تلاش، 289/98 کیلوگرم بر ساعت محاسبه گردید. با توجه به نمودار صید انتخابی 50 L برای ماهی گم گام 11/19 سانتی متر، برای ماهی یال اسبی 28/18 سانتی متر و ماهی گوازیم دم رشته ای ژاپنی 12/44 سانتی متر محاسبه گردید. نتایج نشان می دهد که ماهی های یال اسبی صید شده در همان طول بلوغ جنسی و ماهیان گوازیم دم رشته ای ژاپنی صید شده در طولی بسیار کم تر از طول بلوغ جنسی قرار دارند که از این نظر تور ترال به کارگرفته شده انتخابی عمل ننموده و تهدیدی برای ذخایر آبزیان منطقه به شمار می رود.
http://www.aejournal.ir/article_67353_a388ef6d6433d72263180ab7ee160782.pdf
2018-03-21
263
270
صید انتخابی ترال
روش کاور
Trichiurus lepturus
چابهار
دریای عمان
علی
سپاهی
sepahiali1992@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
سعید
گرگین
sgorgin@gau.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
خوان
سانتوز
3
سازمان تحقیقاتی شیلاتی دریای بالتیک، رستوک، آلمان
AUTHOR
رضا
عباسپور نادری
r_naderimail@yahoo.com
4
سازمان شیلات ایران، تهران، ایران
AUTHOR
محمودرضا
آذینی
5
مرکز تحقیقات شیلاتی آبهای دور، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، چابهار، ایران
AUTHOR
بی همتا، م.ر. و زارع چاهوکی، م.ع.، 1390. اصول آمار در علوم منابع طبیعی. انتشارات دانشگاه تهران. 300 صفحه
1
خدادادی جوکار، ک.، 1380. گزارش نهایی بررسی هیدروبیولوژی آب های منطقه خوران منشعب از لافت و خمیر. مرکز تحقیقات آبزیان خلیج فارس و دریای عمان. 80 صفحه.
2
رادفر، ف.؛ گرگین، س. و ادگی پور، م.، 1392. مطالعه ترکیب صید با رشته قالب طویل در ناحیه شمال غربی خلیج فارس. مجله پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. دوره 1، شماره 3، صفحات 25 تا 37.
3
رییسی، ه.، 1391. ارزیابی ذخایر ماهی یال اسبی سر بزرگ Trichiurus lepturus و تعیین ترکیب صید ضمنی در ترال های صید این گونه در آب های بوشهر و هرمزگان. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 90 صفحه.
4
سپاهی، ع.؛ گرگین، س.؛ سانتوز، خ.؛ عباسپورنادری، ر. و آذینی، م.ر.، 1395. مطالعه ترکیب و تنوع گونه های ماهیان صید شده در تورهای ترال آب های دریای عمان- منطقه چابهار. مجله پژوهش های ماهی شناسی کاربردی. دوره 1، شماره 3، صفحات 29 تا 41.
5
فولادی ثابت، ا.، 1393. مقایسه ترکیب و تراکم صیدهدف و ضمنی در ترال میان آبی یالاسبی بین صیدگاه های استان بوشهر و هرمزگان در آب های خلیج فارس. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 59 صفحه.
6
فخری، ع.؛ تقوی مطلق، س.ا.؛ کوچنین، پ. و صفاهیه، ع.ر.، 1390. ترکیب طولی، رشد، مرگ و میر و سطح بهره برداری ماهی شیر (Scomberomorus commerson) در آب های ساحلی استان بوشهر. مجله اقیانوس شناسی. سال 2، شماره 7، صفحات 47 تا 55.
7
کمالی، ع.، 1384. بررسی تولیدمثل ماهیان یال اسبی (Trichiurus lepturus) در آب های استان هرمزگان. ششمین همایش علوم و فنون دریایی. 68 صفحه.
8
کردگاری، م.، 1388. تعیین خصوصیات زیستی و پارامترهای پویایی جمعیت ماهی سلطان ابراهیم گوازیم دم رشته ای ژاپنی در آب های ساحلی استان بوشهر. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندرعباس، 48 صفحه.
9
کیمرام، ف. 1379. پویایی شناسی و مدیریت جمعیت تون زرد باله دریای عمان. پایان نامه دکتری بیولوژی دریا. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم تحقیقات. 125 صفحه.
10
Alverson, D.L.; Freeber, M.H.; Murawski, S.A. and Pope, J.G., 1994. A Global assessment of fisheries by catch and discard. FAO. Fisheries Technical. 291p.
11
Bihamta, M.R. and Zare Chahkoei, M.A., 2011. Principles of statistics for the natural resources sciences. Tehran University Publication. 300 p.
12
Blegvad, H. and Loppenthin, B., 1944. Fishes of the Iranian Gulf. Danish Scient. Invest. Iran, Einar Munksgaard, Copenhagen. 247 p.
13
Fischer, W. and Bianchi, G., 1984. FAO species identification sheets for fishery purposes. Western Indian Ocean (Fishing Area 51). Prepared and printed with the support of the Danish International Development Agency (DANIDA). FAO, Rome. Vol. 1, pp: 1-6.
14
Hermann, B., 2010. Experimental and analytical methods in evaluating trawl codend selectivity. Power point in Conference: SmartFish at Zhoushan, China. pp: 381-411.
15
Ilona, C.S.; Margaret, J.M.; Peter, J. and John, P.S., 2001. Bycatch diversity and variation in a tropical Australian penaeid fishery; the implications for monitoring. Fisheries Research. Vol. 53, pp: 283-301.
16
Kennelly, S.J., 1995. The issue of bycatch in Australia’s demersal trawls fisheries. Reviews in Fish Biology and Fisheries. Vol. 5, pp: 213-234.
17
Paighambari, S.Y. and Daliri, M., 2012. The by-catch composition of shrimp trawl fisheries in Bushehr coastal waters, the northern Persian Gulf. Journal of the Persian Gulf. Vol. 3, No. 7, pp: 27-36.
18
Rajeswari, G.; Prakash, R.R.; Sreedhar, U. and Kumar, M.S., 2013. Size selectivity of diamond and square mesh codends for largehead hairtail Trichiurus lepturus Linnaeus, 1758. ICAR. pp: 18-22.
19
Rice, J. and Gislason, H., 1996. Patterns of change in the size spectra of numbers and diversity of the North Sea fish assemblage, as reflected in surveys and models. ICES J. Mar. Sci. Vol. 53, pp: 1214-1225.
20
Santos, J.; Herrmann, B.; Mieske, B.; Stepputtis, D.; Krumme, U. and Nilsson, H., 2015. Reducing flatfish bycatch in roundfish fisheries. Fisheries Research. Vol. 32, No. 1, pp: 15-22.
21
Sparre, P. and Venema, S.C., 1998. Introduction to tropical fish stock assessment, FAO Fisheries Technical Paper. 450 p.
22
Valinassab, T.; Daryanabard, R.; Dehghani, R. and Pierce, G.J., 2006. Abundance of demersal fish resources in the Persian Gulf and Oman Sea. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. Vol. 86, No. 06, pp: 1455-1462.
23
Wileman, D.A., 1996. Manual of methods of measuring the selectivity of towed fishing gears. ICES cooperative research report. Vol. 215, pp: 38-99.
24
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی ترکیب صید، فراوانی طولی و صید در واحد تلاش تور گوشگیر تون ماهیان در شهرستان کنارک، سیستان و بلوچستان، ایران
هدف از این مطالعه بررسی ترکیب صید، فراوانی طولی و صید در واحد تلاشتور گوشگیر تون ماهیان بود. این مطالعه در دو فصل زمستان 1394 و بهار 1395 در منطقه صیادی شهرستان کنارک واقع در استان سیستان و بلوچستان صورت پذیرفت. عملیات نمونهبرداری با دو لنج با طول 26 متر و عرض 7/67 متر انجام شد. درتحقیق حاضر ترکیب صید در دو فصل شامل خانوادههای تون ماهیان، گیش ماهیان، گربه ماهیان، شهری ماهیان، کوتر، سرخو ماهیان، سنگسر ماهیان، حلوا سفید، شوریده ماهیان، کفزیان و سپرماهیان بود که به ترتیب 48/46، 25/01، 7/3، 3/93، 3/53، 3/37، 3/04، 2/74، 1/44 و 0/32 درصد از کل صید را به خود اختصاص دادند.بیش ترین درصد وزنی صید گوشگیر در فصول زمستان و بهار متعلق به تون ماهیان (Scombridae) به ترتیب با مقادیر 30/67 و 41/42 درصد بود. هم چنین کم ترین درصد وزنی در فصل زمستان را سپرماهیان (Dasyatis bennetti) با 0/09 درصد و کم ترین درصد وزنی در فصل بهار را شهری ماهیان (Lethrinus nebulosus) با 0/11 درصد به خود اختصاص دادند. خانواده تون ماهیان (Scombridae) با 4 گونه بیش ترین تعداد گونه را در فصول صید دارا بود. بیش ترین فراوانی طولی در تن ماهیان به ترتیب در ماهی شیر دامنه طولی 119-105سانتی متر (40/7 %)، در ماهی هوور دامنه طولی 92-84 سانتی متر (40 %) و در ماهی زرده دامنه طولی 65-58 سانتی متر (38 %) بود. هم چنین بر اساس مقایسه میانگین های صید در واحد تلاشکل صید بین دو فصل زمستان و بهار تفاوت معنی داری طی دوره نمونه برداری مشاهده نشد (0/05>P).
http://www.aejournal.ir/article_67420_50e07aa3066a450c191d969ab3e0c27b.pdf
2018-03-21
271
280
تور گوشگیر
ترکیب صید
صید به ازای واحد تلاش
تون ماهیان
سید یوسف
پیغمبری
sypaighambari@gau.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
حسین
مداح عارفی
hosyn.madaharefi@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
مجتبی
پولادی
mojtaba_fishery1987@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
اسدی، ه. و دهقانی، ر.، 1375. اطلس ماهیان خلیج فارس و دریای عمان. موسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران. 186 صفحه.
1
اشجع اردلان، آ.، 1378. تعیین پراکنش و بررسی بیولوژی رشد اویستر صخره ای در سواحل دریای عمان. پایان نامه دکتری بیولوژی دریا. دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات. 134 صفحه.
2
پارسا، م.؛ پیغمبری، س.ی.؛ قربانی، ر. و شعبانی، م.ج.، 1393. بررسی تأثیر فاکتور ضریب آویختگی بر روی میزان صید تورهای گوشگیر مولتی فیلامنت در سواحل استان بوشهر (خلیجفارس). مجله بومشناسی آبزیان. سال 2، شماره 4، صفحات 47 تا 57.
3
خدادادی، ر.؛ بیات، ی.؛ گلستانی، ن. و کهفی زاده، ف.، 1382. تعیین ترکیب طولی و گونهای تورهای گوشگیر شیری دو طبقه در شهرستان دیر استان بوشهر. گزارش نهایی طرح تحقیقاتی موسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده میگوی کشور (بوشهر). 40 صفحه.
4
درویشی، م.؛ بهزادی، س. و سالارپور، ع.، 1382. برخی ازخصوصیات پویایی جمعیت ماهی زرده (Euthynnus affinis) درآبهای محدوده استان هرمزگان (خلیجفارس ودریای عمان). مجله پژوهش وسازندگی. شماره 60.، صفحات 84 تا 89.
5
درویشی، م.، 1387. پویایی شناسی و مدیریت صید ماهی شیر (Scombromorus commerson) درآبهای استان هرمزگان. مجله علمی آبزیان و شیلات. سال 1، شماره 1، صفحات 32 تا 42.
6
دستباز، م.، 1390. مطالعه ترکیب کمی و تنوع گونهای صید با تور گوشگیر در شهرستان بندر لنگه و تعیین چشمه استاندارد پیشنهادی برای ماهی شیر (Scombromorus commerson ). پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 76 صفحه.
7
سابکزئی، ا.، 1394. بررسی صید به ازای واحد تلاش، ترکیب گونه ای و فراوانی طولی ماهی شوریده معمولی (Otolithes ruber) در تور مونوفیلامنت گوشگیر کف در منطقه پسابندر چابهار. پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 54 صفحه.
8
سازمان شیلات ایران. 1393. سالنامه آماری 1393-1392. دفتر برنامه و بودجه و گروه آمار و مطالعات توسعه شیلاتی. 64 صفحه.
9
علی میرزایی، م.ر.، 1394. تاثیرات تغییرات زمانی و مکانی بر ترکیب صید تورهای گوشگیرسطحی شیری در آب های ساحلی استان هرمزگان، خلیج فارس. پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 50 صفحه.
10
معین، م.، 1391. مقایسه میزان صید بهازای واحد تلاش، ترکیب گونه ای و فراوانی طولی (ماهی شیر) در دو تور گوشگیر مونوفیلامنت و مولتی فیلامنت شیری. در آبهای بوشهر. پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 47 صفحه.
11
Abdulqader, E.A.A.; Godlard, S.; McIlwain, J. and Claereboudt, M., 2001. The GCC Spanish Mackerel Fisheries Monitoring Program. 1st International conference on fisheries, aquaculture and environment in the NW Indian Ocean, Sultan Qaboos university. Muscat.Sultanate of Oman January. pp: 49-55.
12
Claereboudt, M.R.; McIlwain, J.L.; Al-Oufi, H.S. and Ambu-Ali, A.A., 2005. Patterns of reproduction and spawning of the kingfish (Scomberomorus commerson, Lacepede, 1800) in the coastal waters of the Sultanate of Oman. Fisheries Research. Vol. 73, pp: 273-282.
13
Clarke, K.R., 1993. Non-parametric multivariate analyses of changes in community structure. Australian Journal of Ecology. Vol. 18, pp: 117-143.
14
Emmanuel, B.E.; Chukwu, L.O. and Azeez, L.O., 2008. Gill net selectivity and catch rates of pelagic fish in tropical coastal lagoonal ecosystem. African Journal of Biotechnology. Vol. 7, pp: 3962-3971.
15
Emmanuel, B.E. and Chukwu, L.O., 2010. Evaluating the selective performance of gillnets used in a tropical low brackish lagoon south western, Nigeria. Journal of American Science. Vol. 6, pp: 49-52.
16
Fridman, A.L., 1986. Calculations for fishing gear designs. Eds. By. P.J.G. Carrothers. FAO Fishing Manual. Fishing News Books, Oxford. 241 P.
17
Grandcourt, E.M.; Al Abdessalaam, T.Z.; Francis, F. and Al Shamsi, A.T., 2005. Population biology and assessment of the orange-spotted grouper, Epinephelus coioides (Hamilton, 1822), in the southern Persian Gulf, Fisheries Research. Vol. 74, No. 1, pp: 55-68.
18
Ghodrati, S.M.; Taghavi motlagh, A.; Seyfabadi, S.J. and Abtahi, B., 2007. Age, Growth and Mortality Rate of the Narrow-Barred Spanish Mackerel Scomberomerus commerson (Lacepède, 1800) in Coastal Waters of Iran from Length Frequency Data. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 7, pp: 115-121.
19
Guy, C.S.; Willis, D.W. and Schultz, R.D., 1996. Comparison of catch per unit effort and size structure of white crappies collected with trap nets and gill nets. North American Journal of Fisheries Management. Vol. 16, pp: 947-951.
20
Marsia, I. and Batista, C.M., 2009. Catches of target species and bycatches of an artisanal fishery: The case study of a trammel net fishery in the Portuguese Coast. Fisheries Research. Vol. 100, pp: 167-177.
21
Metin, C.; Lok, A. and Ilkyaz, T.A., 1998. The selectivity of gill net in different mesh size for Diplodus annularis (L. 1758) and Spicara flexuosa (Rafinesque, 1810). Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 15, pp: 3-4.
22
Millner, R.S., 1985. The use of anchord gill and tangle nets in the sea fisheries of England and Wales. MAFF Directorate of fisheries Research, Lowestoft, UK, Laboratory Leaflet. 57 P.
23
Newman, S.J.; Williams, D.M.; Mackie, M.C. and Lewis, P.D., 2012. Age-based demography and relative fisheries productivity of Spanish mackerel, Scomberomorus commerson (Lacepede, 1800) in Western Australia. Fisheries Research. Vol. 129, pp: 46-60.
24
Pierce, R.B.; Tomcko, C.M. and Kolander, T.D., 1994. Indirect and direct estimates of gillnet size selectivity for northern pike. North American Journal of Fisheries Management. Vol. 14, pp: 170-177.
25
Pillai, P.P.; Pillai, N.G.; Sathianandan, K.T.V. and Kesavan Elaythu, M.N.K., 1993. Fishery, Biology and Stock assessment of Scomberomorus commerson from the southwest coast of india. Expert Consultation on Indian Ocean tuna. 5th session, Mahe, Seychelles. 21 P.
26
Siddeek, M., 1995. Review of fisheries biology of Scomberomorous and Acanthocybium species in the western Indian Ocean (FAO, Area 51. WGP). 18 P.
27
Sturges, H., 1926. The choice of a class-interval. Journal of the American Statistical Association. Vol. 21, No.153, pp: 65-66.
28
Taghavi, M.S.A.; Hashemi, S.A. and Kochanian, P., 2010. Population biology and assessment of Kawakawa (Euthynnus affinis) in Coastal Waters of the Persian Gulf and Sea of Oman (Hormozgan Province). Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 9, No. 2, pp: 315-326.
29
Sparre, P. and Venema, S.C., 1998. Introduction to Tropical Fish Stock Assessment I: Manual. FAO Fish. Tech. paper, 306.1 Rev.2. Rome. 407 P.
30
Von Brandts, A., 2005. Fish catching methods of the words. Edited by Thomas Wendt, Erdmann Dahm, Klaus Lange, Otto Gabriel, Blackwell Publishing Limited. 536 P.
31
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی نسبت جنسی و رابطه وزن با کاراپاس خرچنگ شناگر آبی (1775Portunus segnis Forskal,) در آب های استان هرمزگان
در این مطالعه خصوصیات زیستی خرچنگ شناگر آبی (Portunus segnis) در آب های استان هرمزگان (از سیریک تا بندرعباس) مورد مطالعه قرار گرفت. تعداد 722 نمونه خرچنگ به مدت یک سال از خرداد 1390 تا اردیبهشت 1391 توسط تور ترال میگو و گوشگیر صید گردید. 57/9 درصد از ترکیب صید را نر و 42/1 درصد را خرچنگ های ماده شامل شدند که نسبت بین نر و ماده (1/3 :1) اختلاف معنی داری با هم داشتند (0/05>p). کوچک ترین و بزرگ ترین عرض کاراپاس به ترتیب 5/2 و 17/9 سانتی متر و هم چنین حداقل و حداکثر وزن آن ها به ترتیب 2/8 و 398/78 گرم بود. میزان b برای جنس نر و ماده به ترتیب در رابطه وزن- عرض کاراپاس 3/24 و 2/69 و در رابطه وزن-طول کاراپاس 3/02 و 2/76 تعیین شد. الگوی رشد آلومتریک به دست آمد. هم چنین میانگین وزن در جنس های نر و ماده 70/05±107/46 و 49/81±114/44 محاسبه شد که از اختلاف معنی داری برخوردار بود (0/05>p). فاکتور وضعیت در عرض کاراپاس 2/66±6/86 و در طول کاراپاس 13/06±65/54 محاسبه گردید. مطالعه حاضر می تواند برای زیست شناسان و محققین شیلاتی در جهت شناخت بیش تر خصوصیات جمعیتی این گونه مفید باشد.
http://www.aejournal.ir/article_67487_3f9cb322b822e48778f67d2a1b4f6b0f.pdf
2018-03-21
281
288
رشد
نسبت جنسی
Portunus segnis
تنگه هرمز
آب های استان هرمزگان
فاطمه
طادی بنی
tadibeni@yahoo.com
1
گروه زیست دریا، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
جمیله
پازوکی
j-pazooki@sbu.ac.ir
2
گروه زیست دریا، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران
AUTHOR
محسن
صفائی
msn_safaie@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
امیرعلی
مرادی نسب
moradinasab88@yahoo.com
4
باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی واحد لاهیجان، لاهیجان، ایران
AUTHOR
جمیلی، ش.، 1375. نقش هیدروکربن های نفتی بر فیزیولوژی تولیدمثل صدف مرواریدساز محار. رساله دکتری بیولوژی دریا. تهران، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات. 209 صفحه.
1
کردوانی، پ.، 1374. اکوسیستم های آبی ایران (خلیج فارس و دریای عمان). انتشارات سمت. تهران. 268 صفحه.
2
قربانی، ن.؛ سیف آبادی، ج.؛ عوفی، ف. و ابطحی، ب.، 1381. ارتباط طول کاراپاس و عرض کاراپاس با وزن در خرچنگ شناگر آبی، pelagicus Portunus، در آب های ساحلی استان بوشهر. مجله علوم دریایی ایران. دوره 2، شماره 1، صفحات 59 تا 66.
3
مقدم، پ؛ نوری، ا.؛ کامرانی، ا.؛ اکبرزاده، آ. و کلوانی نیتلی، ب.، 1393. بررسی برخی از خصوصیات ریخت سنجی در خرچنگ شناگر آبی Portunus pelagicus (Linnaeus, 1758)در آب های خلیج فارس در استان هرمزگان. مجله شیلات، منابع طبیعی ایران. دوره 67، شماره 4، صفحات 611 تا 623.
4
ولی نسب، ت.؛ حسین زاده صحافی، ه.؛ وثوقی، ع. و اسکندری بنچناری،م.،1383. تولیدمثل خرچنگ شناگر(Portunus pelagicus) در آب های استان هرمزگان (حوضه بندرعباس). مجله پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. شماره 64، صفحات 52 تا 57.
5
Abdell Razek, F.A., 1988. Some biological studies on the Egyptian crab Portunus pelagicus (Linnaeus 1766). Acta Adriat. Vol. 29, pp: 133-143.
6
Atar, H.H. and Secer, S., 2003. Width/Length-Weight Relationships of the Blue Crab (Callinectes sapidus Rathbun, 1896) Population Living in Beymelek Lagoon Lake Turk J Vet Anim Sci. Vol. 27, pp: 443-447.
7
Atiqullah Khan, M. and Mustaqeem, J., 2013. Carapace width weight relationship of mud crab Scylla serrata (FORSKAL, 1775) from Karachi coast. Senra academic Publishers, British Columbia. Vol. 7, No. 2, pp: 2381-2386.
8
Bagenal, T.B., 1978. Methods of Assessment of fish production in freshwaters. 3rd edn. IBP Handbook. Vol. 3, pp: 130-136, 166-169.
9
Bello Olusoji, O.A.; Anifowose, O.J. and Sodamola, M.Y., 2009.Length Weight Relationships, Condition Factor and Fecundity of the West Africa freshwater crab, Sudanonautes africanus (Miline- Edwards 1883), in Western Nigeria from West African. Journal of Applied Ecology. Vol. 16, pp: 65-74.
10
Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology. South Asian Publishers Ltd. 36 Nejati subhosh mary. Daryagam, New Delhi, 110002, India. 157 p.
11
Carpenter, K.E.; Krupp, F.; Jones, D.A. and Zajonz, U., 1997. Living marine resources of Kuwait, Eastern Saudi Arabia, Bahrain, Qatar and UAE. FAO Species Identification Field guide for Fishery Purposes, Rome, Italy: FAO Publication. 293 p.
12
FAO. 2009. Report of the Workshop on Fishery Stock Indicators and Stock Status. Teheran, the Islamic Republic of Iran, 26-29 July 2009. FAO Fisheries and Aquaculture Report. No. XXX. Cairo, FAO. 2009. XXp.
13
Hosseini, M.; Vazirizade, A.; Parsa, Y. and Mansori, A., 2012. Sex Ratio, Size Distribution and Seasonal Abundance of Blue Swimming Crab, Portunus pelagicus (Linnaeus, 1758) in Persian Gulf Coasts, Iran. World Applied Sciences Journal. Vol. 17, No. 7, pp: 919-925.
14
Hosseini, M.; Pazooki, J. and Safaei, M., 2014. Size at Maturity, Sex Ratio and Variant Morphometrics of Blue Swimming Crab Portunus segnis (Forskal, 1775) from Boushehr Coast (Persian Gulf). Journal of Marine Science Research Devlopment. Vol. 4, No. 2, pp: 1-5.
15
Hosseini, M.; Pazooki, J.; Safaei, M. and Tadi-Beni, F., 2014. The Biology of the Blue Swimming Crab Portunus segnis (Forskal, 1775) along the Bushehr Coasts, Persian Gulf. Journal of Environmental Studies of Persian Gulf. Vol. 1, No. 2, pp: 81-92.
16
Kathrivel, M.; Kulasekarapandain, S. and Balasu bramanian, C.P., 2004. Mud crab culture in India, Chennai, Tamil Nadu, India. Bulletin. Vol. 17, No. 12, pp: 99-110.
17
Kangas, M.I., 2000. Synopsis of the biology and exploitation of the blue swimmer crab Portunus pelagicus Linnaeus in Western Australia. Fisheries research report No. 121, Fisheries Western Australia, Perth, Western Australia. pp: 1-22.
18
Kailola, P.J.; Williams, M.J.; Stewart, P. C.; Reichelt, R.E.; McNee, A. and Grieve, C., 1993. Australian Fisheries Resources. Canberra, Bureau of Resource Sciences, Department of Primary Industries and Energy & the Fisheries Research and Development Corporation.
19
Lai, J.C.Y.; Ng, P.K.L. and Davie, P.J.F., 2010. A Revision of the Portunus pelagicus (Linneus, 1758) species complex (Crustacea: Brachura: Portunidae), with the recognition of 4 species. The Raffles Bul. Zool. Vol. 58, No. 2, pp: 199-237.
20
Miyasaka, H.; Kato, M.G.; Goda, Y. and Omori, K., 2007. Length-weight relationships of two varied crab species, Helice tridens and Chasmagnathus convexus, in Japan. Limnology. Vol. 8, pp: 81-83.
21
Pauly, D., 1983. Some simple methods for the assessment of tropical fish stocks. FAO Fish. Tech. Pap. Vol. 234: 52 p.
22
Pauly, D., 1984. Fish Population Dynamics in Tropical Waters: A Manual for use with programmable calculators. ICLARM. Manila, Philippines. 325 p.
23
Safaie, M.; Kiabi, B.; Pazooki, J. and Shokri, M.R., 2013. Growth parameters and mortality rates of the blue swimming crab, Portunus segnis in coastal waters of Persian Gulf and Gulf of Oman, Iran Indian J. Fish. Vol. 60, No. 1, pp: 9-13.
24
Safaie, M.; Pazooki, J.; Kiabi, B. and Shokri, M.R., 2013. Reproductive biology of blue swimming crab, Portunus segnis in coastal waters of Persian Gulf and Oman Sea, Iran, Iranian J of Fisheries Sciences. Vol. 12, No. 2, pp: 430-444.
25
Schmidt-Nielsen, K., 1984. Scaling- why is animal size so important? 21-32. (Cambridge University Press, New York).
26
Sparre, P., 1992. Introduction to Tropical Fish Stock Assessment. Part IManual. FAO Fisheries Technical Paper 306/1. Rev 1. 1992. Rome.
27
Sudtongkong, C., 2006. Reproductive biology of P. pelagicus Linnaeus in Sikao Bay southern Thailand, Department of Marine Science Rajamangala University Thailand, International conference on “coastal oceanography and sustainable marine aquaculture, confluence & synergy” Kota Kinabalu, Sabah-Malaysia. pp: 138-150.
28
Sumpton, W.D.; Gaddes, S. and Mclennan, M., 2000. Blue-swimmer crab fishery in Queensland. Summary of changes 1984-1998. Department of Primary Industries, Queensland.
29
Sumpton, W.D.; Potter, M.A. and Smith, G.S., 1994. Reproduction and growth of the commercial sand crab, Portunus pelagicus (L.) in Moreton Bay, Queensland. Asian Fisheries Science. Vol. 7, pp: 103-113.
30
Thirunavukkarasu, N. and Shanmugam, A., 2011. Length Weight and Width-Weight Relationships of Mud Crab Scylla tranquebarica (Fabricius, 1798). European Journal of Applied Sciences. Vol. 3, No. 2, pp: 67-70.
31
Turkmen, M. and Akyurt, I., 2000. The population structure and growth properties of Chalcalburnus mossulensis (Heckel, 1843) caught from Askale region of river Karasu. Turkish J of Biology. Vol. 24, pp: 95-111.
32
UNEP. 1999. Overview on land-based source and affecting the marine environment in the ROPME Sea Area. UNEP/GPA Co. ordination official & studies No. 168.
33
Weng, H.T., 1992. The sand crab Portunus pelagicus (Linnaeus) populations of two different environments in Queensland. Fisheries Research. Vol. 13, pp: 407-422.
34
Zar, J.H., 1999. Biostatistical Analysis. 4th edition. Prentice-Hall, Englewood Cliffs, New Jersey. 929 p.
35
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر جایگزینی پودر ریزجلبک های اسپیرولینا Spriulina platensis و کلرلا Chlorella vulgaris با پودر ماهی بر عملکرد رشد، ترکیبات لاشه و پروفیل اسیدهای چرب میگوی وانامی Litopenaeus vannamei
این مطالعه به منظور ارزیابی و مقایسه تاثیر جایگزینی پودر ریزجلبک های اسپیرولینا Spriulina platensis و کلرلا Chlorella vulgaris با پودر ماهی بر عملکرد رشد، ترکیبات لاشه و پروفیل اسیدهای چرب در میگوی وانامی Litopenaeus vannamei صورت گرفت. میگوها با میانگین وزن 0/2± 2/6گرم در 9 تیمار آزمایشی شامل یک تیمار شاهد (تغذیه با جیره بدون پودر جلبک) و هشت تیمار آزمایشی (تغذیه با جیره حاوی سطوح 25، 50، 75 و 100 درصد از پودر اسپیرولینا یا کلرلای جایگزین شده با آرد ماهی) قرار گرفتند. پس از هشت هفته تغذیه، وزن پایانی و افزایش وزن در تیمار 25 درصد کلرلا بالاترین مقدار را داشت (0/05>P)، اما نرخ رشد ویژه و ضریب تبدیل غذایی در بین تیمارها اختلاف معنی داری را نشان نداد (0/05<P). میزان پروتئین در لاشه میگوهای تغذیه شده با 100 درصد اسپیرولینا به طور معنی داری بالاتر بود (0/05>P)، ولی اختلاف معنی داری در میزان رطوبت، چربی و خاکستر لاشه میگوها مشاهده نشد (0/05<P). هم چنین مشاهده شد که محتوای اسیدهای چرب بلندزنجیر چندغیراشباع از قبیل آلفالینولنیک اسید، دکوزاهگزاانوئیک اسید، ایکوزاپنتاانوئیک اسید، لینولئیک اسید و آراشیدونیک اسید در تیمارهای تغذیه شده با جلبک ها عمدتاً بالاتر از گروه شاهد بود (0/05>P). به طورکلی نتایج این تحقیق نشان می دهد که ریزجلبک های اسپیرولینا و کلرلا هر دو می توانند در جیره میگوی وانامی بدون داشتن اثرات منفی در عملکرد این میگو مورد استفاده قرار بگیرند اما به نظر می رسد تیمار 25 درصد کلرلا نتایج موفق تری به همراه دارد.
http://www.aejournal.ir/article_67513_188521051b6b2752d2e813e67d419f54.pdf
2018-03-21
289
296
ریزجلبک
میگو
عملکرد رشد
پروفیل اسیدچرب
سمیه
پاک روان
pacravan@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
AUTHOR
آرش
اکبرزاده
akbarzadeh@alumni.ut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
میر مسعود
سجادی
mmsajjadi@hotmail.com
3
گروه شیلات، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
عبدالمجید
حاجی مرادلو
ahajimoradloo@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران
AUTHOR
فرزانه
نوری
yalda.45@gmail.com
5
پژوهشکده مطالعات دریاچه ارومیه، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران
AUTHOR
اکبری، پ. و سندک زهی، ا.، 1395. اثر پودر جلبک اسپیرولینا Spirulina platensis روی رشد، تغذیه، ترکیب شیمیایی و اسیدهای چرب لاشه ماهی کفال خاکستری Mugil cephalus Linnaeus. نشریه شیلات. دوره 69، شماره 1، صفحات 1 تا 9.
1
AOAC(Association of official analytical chemists). 1995. Official Methods of Analysis. 16th edn, AOAC, Arlington, VA, USA.
2
Atanasoff, A.P., 2014. Replacement of fish meal by ribotricin in diets of carp Cyprinus carpio. Macedonian Veterinary Review. Vol. 37, pp: 55-59.
3
Badwy, T.M.; Ibrahim, E.M. and Zeinhom, M.M., 2008. Partial replacement of fish meal with dried microalga (Chlorella spp and Scenedesmus spp) in nile tilapia (Oreochromis niloticus) diets, 8th International Symposium on Tilapia in Aquaculture, Egypt.
4
Bai1, S.C.; Koo, J.W.; Kim, K.W. and Kim, S.K., 2001. Effects of Chlorella powder as a feed additive on growth performance in juvenile Korean rockfish, Sebastes schlegeli (Hilgendorf). Aquaculture Research. Vol. 32, pp: 92-98.
5
Becker E.W. and Venkataraman, L.V., 1984. Production and utilization of blue-green algae, Spirulina in india. Biomass. Vol. 4, pp:105-125.
6
Yamaguchi, K., 1996. Recent advance in micro-algal bioscience in Japan, with special reference to utilization of biomass and metabolites: a review. Journal of Applied Phycology. Vol. 8, pp: 487-490.
7
Becker, E.W., 2004. Micro algae in human and animal nutrition. In: Hand book of microalgal culture (ed. by A. Richmond). Blackwell, Oxford. pp: 312-351.
8
Bengwayan, P.T.; Laygo, J.C.; Pacio, A.E.; Poyaoan, J.L.Z.; Rebugio, J.F. and Yuson, A.L.L., 2010. A comparative study on the antioxidant property of Chlorella (Chlorella sp.) tablet and glutathione tablet. E-InternationalScientificResearch Journal. Vol. 2, No. 2, pp: 25-35.
9
De Silva, S.S. and Anderson, T.A., 1995. Fish Nutrition in Aquaculture. Chapman & Hall, London, UK. 319 P.
10
Direkbusarakom, S., 2004. Application of medicinal herbs to aquaculture in Asia. Walailak Journal of Science and Technology. Vol. 1, No. 1, pp: 7-14.
11
Ghaeni, M.; Matinfar, A.; Soltani, M.; Rabbani, M. and Vosoughi, A., 2011. Comparative effects of pure Spirulina powder and other diets on larval growth and survival of green tiger shrimp, Peneaus semisulcatus. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 10, pp: 208-217.
12
Iba, W.; Rice, M.A. and Wikfors, G.H., 2014. Microalgae in Eastern Pacific White Shrimp, Litopenaeus vannamei (Boone 1931) hatcheries: A review on roles and culture environments. AcousticalsocietyofJapan.Vol. 27, pp: 212-233.
13
Jaime Ceballos B., Villarreal, H.; Garcia, T.; Perez-Jar,L.and Alfonso, E., 2005. Effect of Spirulina platensis meal as feed additive on growth, survival and development in Litopenaeus schmitti shrimp larvae. Revista de Investigaciones Marinas. Vol. 26, pp: 235-241.
14
Jalaja Kumari, D.; Babitha, B.; Jaffar, S.K.; Guru Prasad, M. and Ibrahim, M.D., 2011. Potential health benefits of spirulina platensis. An International J of Advances in Pharmaceutical Science. Vol. 2, No. 4, pp: 417-422.
15
James R.; Sampath, K.; Thangarathinam, R. and Vasudhevan, I., 2006. Effect of dietary Spirulina level on growth, fertility, coloration and leucocyte count in red swordtail, Xiphophorus helleri. Israeli Journal of Aquaculture Bamidgeh. Vol. 58, pp: 97-104.
16
Lall, S.P. and Anderson, S., 2005. Amino acid nutrition of salmonids: Dietary requirements and bioavailability. In: Montero, D.; Basurco, B.; Nengas, I.; Alexis, M.; Izquierdo, M. (Eds). Mediterranean fish nutrition. Zaragoza: Ciheam. Cahiers OptionsMéditerranéennes. Vol. 63, pp: 73-90.
17
Lepage, G. and Roy, C.C., 1984. Improved recovery of fatty acid through direct transesterification without prior extraction or purification. J of Lipid Research. Vol. 25, pp: 1391-1396.
18
Lu, J.; Yoshizaki, G.; Sakai, K. and Takeuchi, T., 2000. Acceptability of raw Spirulina to larval tilapia Oreochromis niloticus. Fisheries Science. Vol. 68, pp: 51-58.
19
Macias Sancho J.; Henrique Poersch, L.; Bauer, W. and Alberto Romano, L., 2014. Fishmeal substitution with Arthrospira (Spirulina platensis) in a practical diet for Litopenaeus vannamei: Effects on growth and immunological parameters. Aquaculture. Vol. 426-427, pp: 120-125.
20
Maliwat, G.C.; Velasquez1, S.; Robil, J.L.; Chan, M.; Traifalgar, R.F.; Tayamen, M. and Ragaza, J.A., 2016. Growth and immune response of giant freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii (De Man) postlarvae fed diets containing Chlorella vulgaris (Beijerinck). Aquaculture Reserch. pp: 1-11.
21
Munirasu, S.; Uthayakumar, V.; Ramasubramanian, V. and Kiruba, A., 2014. Effect of live feed Mesocyclops aspericornis survival, growth, biochemical constituents and energy utilization of the freshwater fish catla catla.Journal of Aquaculture Feed Science and Nutrition. Vol. 6, No. 1, pp: 23-31.
22
Nakagawa H. and Gomez Diaz., G., 1995. Usefulness of Spirulina sp. meal as feed additive for giant freshwater prawn, Macrobrachium rosenbergii. Suisan zoshoku. Vol. 43, pp: 521-526.
23
Nandeesha M.C.; Gangadhara, B., Varghese, T.J. and Keshavanath, P., 1998. Effect of feeding Spirulina platensis on the growth, proximate composition and organoleptic quality of common carp, Cyprinus carpio. Aquaculture Research. Vol. 29, pp: 305-312.
24
Nandeesha M.C.; Gangadhara, B.; Manissery, J.K. and Venkataraman, L.V., 2001. Growth performance of two Indian major carps, catla (Catla catla) and rohu (Labeo rohita) fed diets containing different levels of Spirulina platensis. Bioresource Technology. Vol. 80, pp: 117-120.
25
Olvera Novoa M.; Dominguez Cen, L.; Olivera Castillo, L. and Martinez Palacios, C.A., 1998. Effect of the use of the microalgae Spirulina maxima as fish meal replacement in diets for tilapia, oreochromismossambicus (peters), fry. Aquaculture research. Vol. 29, pp: 709-715.
26
Oujifard, A.; Seyfabadi, J.; Kenari, A.A. and Rezaei,M., 2012. Fish meal replacement with rice protein concentrate in a practical diet for the Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei. Aquaculture International. Vol. 20, No. 1, pp: 117-129.
27
Palmegiano G.B.; Agradi, E., Forneris, G., Gai, F.; Gasco, L., Rigamonti, E.; Sicuro, B. and Zoccarato, I., 2005. Spirulina as a nutrient source in diets for growing sturgeon. Aquaculture Research. Vol. 36, pp: 188-195.
28
Palmegiano G.B.; Gai, F.; Daprà, F.; Gasco, L.; Pazzaglia, M. and Peiretti, P.G., 2008. Effects of Spirulina and plant oil on the growth and lipid traits of white sturgeon fingerlings. Aquaculture Research. Vol. 39, pp: 587-595.
29
Priyadarshani, I. and Rath, B., 2012. Commercial and industrial applications of micro algae – A review. Journal of Algal Biomass Utilization. Vol. 3, No. 4, pp: 89-10.
30
Promya, J. and Chitmanat, C., 2011. The effects of Spirulina platensis and Cladophora algae on the growth performance, meat quality and immunity stimulating capacity of the African sharptooth catfish (Clarias gariepinus). International J ofagricultureandbiology. Vol. 13, pp: 77-82.
31
Radhakrishnan, S.; Saravana Bhavan, P.; Seenivasan, C.; Shanthi, R. and Muralisankar, T., 2014. Replacement of fishmeal with Spirulina platensis, Chlorella vulgaris and Azolla pinnata on non-enzymatic and enzymatic antioxidant activities of Macrobrachium rosenbergii. The Journal of Basic & Applied Zoology. Article in press.
32
Rahimnejad, S.; Park, H.G. and Lee, S.M., 2016. effects of dietary inclusion of chlorella vulgaris on growth, blood biochemical parameters, and antioxidant enzyme activity in olive flounder, Paralichthys olivaceus. Journal of the World Aquaculture Society.
33
Shi, X.; Luo, Z.; Chen, F.; Wei1, C.C.; Wu, 1.C.; Zhu, X.M. and Liu, X., 2016. Effect of fish meal replacement by Chlorella meal with dietary cellulase addition on growth performance, digestive enzymatic activities, histology and myogenic genes’ expression for crucian carp Carassius auratus. Aquaculture Research. pp: 1-13.
34
Spolaore, P.; Joannis Cassan, C.; Duran, E. and Isambert, A., 2006. Commercial applications of microalgae. Journal of Bioscience and Bioengineering. Vol. 101, No. 2, pp: 87-96.
35
Tacon, A.G.J.; Hasan, M.R. and Metian, M., 2011. Demand and supply of feed ingredients for farmed fish and crustaceans: trends and prospects. Food and Agriculture Organization, FAO Fisheries and Aquaculture Technical Paper No. 564, Rome.
36
Xu, W.; Gao, Z.; Qi, Z.; Qiu, Z.; Peng, J.Q. and Shao, R., 2014. Effect of Dietary Chlorella on the Growth Performance and Physiological Parameters of Gibel carp, Carassius auratus gibelio. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 14, pp: 53-57.
37
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی میزان صافی خواری صدف مرواریدساز محار Pinctada radiata در شوری های مختلف تحت تاثیر گونه فیتوپلانکتون Isochrysis aff galbana
صدف مرواریدساز محارPinctada radiata از خانواده Pteriidae یکی از مهم ترین صدف های مرواریدساز خلیج فارس می باشد. این مطالعه به منظور تعیین مقدار بهینه شوری و بررسی اثرات آن بر میزان صافی خواری صدف مرواریدساز محار با استفاده از فیتوپلانکتون Isochrysis aff galbana در 5 تیمار شوری (20، 25، 30، 35 و 40 قسمت در هزار) و 3 تکرار صورت پذیرفت. صدف ها با میانگین طول کل (پشتی – شکمی) 6/98 ± 49/67 میلی متر از جزیره هندورابی جمع آوری شد. تراکم اولیه فیتوپلانکتون جهت نغذیه 100000 سلول/ میلی لیتر درنظر گرفته شد و در زمان های یک ساعته و دو ساعته مجدداً تراکم آن ها شمارش شد. بیش ترین صافی خواری در شوری 35 قسمت در هزار بود که میزان آن در ساعت اول 89/46 ± 2459/77 و در ساعت دوم 57/00 ± 2820/39 میلی لیتر/ساعت/صدف رسید که با دیگر تیمارها اختلاف معنی داری داشت (0/05<P). کم ترین صافی خواری در شوری 20 قسمت در هزار بود که میزان آن در ساعت اول 37/02±140/51 و در ساعت دوم 22/11±40/55 میلی لیتر/ ساعت/ صدف رسید که با دیگر تیمارها اختلاف معنی داری داشت (0/05>P). نتایج به دست آمده بهترین شوری جهت انجام فعالیت های بیولوژیکی مانند تغذیه، تنفس و رشد صدف مرواریدساز محار 35 قسمت در هزار می باشد. هم چنین افزایش صافی خواری در ساعت دوم در شوری های 30، 35 و 40 قسمت در هزارنشان دهنده توانایی سازگاری صدف در آن شوری ها می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_68176_1f7304ef8574687b2e81f2b0ef5017d5.pdf
2018-03-21
297
302
صدف مرواریدساز محار
جزیره هندورابی
فیتوپلانکتون Isochrysis aff galbana
Pinctada radiata
عامر
عبداله نژادبنادری
amer_7629@hotmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه پیام نور واحد بین الملل قشم، قشم، ایران
LEAD_AUTHOR
سهیلا
ابراهیمی
s_ebrahimi@pnu.ac.ir
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه پیام نور واحد بین الملل قشم، قشم، ایران
AUTHOR
سامان پژوه، م.، 1392. مروارید (مروری بر تاریخچه، صید و پرورش صدف های مرواریدساز در ایران و جهان). تهران. انتشارات علمی آبزیان. 240 صفحه.
1
عبدالعلیان، ع.، 1386. بررسی میزان فیلتراسیون صدفچه های صدف مرواریدساز لب سیاه بر روی گونه های فیتوپلانکتون Isochrysis affgalbana و Cheatocerod calciterans در دماهای مختلف. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه آزاد واحد بندرعباس. 67 صفحه.
2
رازانی، م.، 1390. راهنمای حفاظت و نگه داری از صدف ها و اشیا صدفی. تهران. انتشارات علمی آبزیان. 162 صفحه.
3
Alagarswami, K. and Victor, A.C.C., 1999. Salinity tolerance and rate of filtration of the pearl oyster Pinctada fucata. Journal of the Marine Biological Association of India. Vol. 18, No. 1, pp: 149-158.
4
Albentosa, M.; Beiras, R. and Camacho, A.P., 1998. Determination of optimal thermal condition for growth of clam Venerupis pullastra seed. Aquaculture. Vol. 126, pp: 315-318.
5
Ballantyne, J.S., 1995. The effects of salinity acclimation on the osmotic proportion of mitochondria from the gill of Crassostrea virginica. Journal Experimental Biology. Vol. 133, pp: 449-456.
6
Doroudi, M.S.; Southgate, P.C. and Lucas, J.S., 2003. Variation in clearance and ingestion rates by larvae of the black-lip pearl oyster Pinctada margaritifera feeding on various microalgae. Aquaculture Nutrition. Vol. 9, pp: 11-16.
7
Lucas, J.S., 1992. Quantitative studies of feeding and nutrition during larval development of the coral reef asteroid Acanthaster planci. Journal Experimentation Marine Biology and Ecology. Vol. 65, pp: 173-193.
8
McFalland, K.; Donaghy, L. and Volety, A.K., 2013. Effect of acute salinity changes on hemolymph osmolality and clearance rate of the non-native mussel, Perna viridis, and the native oyster, Crassostrea virginica, in Southwest Florida. Aquatic Invasions. Vol. 8, pp: 299-310.
9
McMahon, R.F., 2001. Mollusca: Bivalvia. In Ecology and classification of North American freshwater invertebrate, (eds.) J.H. Thorp and A.P. Corich, San Diago: AcademicPress. pp: 315-399.
10
Nakamura, Y.; Hashizume, K.; Koyama, K. and Tamaki, A., 2015. Effects of salinity on burrowing activity, feeding and growth of the clams Mactra venerifomis, Ruditapes philippinarum and Meretrix lusoria. Journal of Shellfish Research. Vol. 24, pp: 1053-1059.
11
Rajesh, K.V.; Mohamed, K.S. and Kripa, V., 2001. Influence of algal cell concentration, salinity and body size on the filtration and ingestion rates of cultivable Indian bivalve. Indian Journal of Marine Sciences. Vol. 30, pp: 87-92.
12
Riisgard, H.U.; Bottiger, L. and Pleissner, D., 2013. Effect of Salinity on Growth of Mussels, Mytilus edulis, with Special Reference to Great Belt (Denmark). Open Journal of Marine Science. Vol. 2, pp: 167-176.
13
Shin, H.C.; Lee, J.H.; Jeong, H.J.; Lee, J.S.; Park, J.J. and Kim, B.H., 2009. The Influence of Water Temperature and Salinity on Filtration Rates of the Hard Clam, Gomphina veneriformis (Bivalvia). The Korean Journal of Malacology. Vol. 25, No. 2, pp: 161-171.
14
Vojdani, F.N.; Salarzadeh, A.; Rameshi, H. and Sareban, H., 2015.Investigating the filtration rate of the Pretty blocked Venus Circenita callipyga by the microalga Isochrysis aff galbana at different temperatures and salinities. New York Science Journal. Vol. 8, No. 3, pp: 56-61.
15
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی بوم شناختی تأثیر پساب مزارع پرورش میگو بر ساختار جوامع بزرگ بی مهرگان کفزی با استفاده از شاخص زیستی BENTIX (مطالعه موردی: خور تیاب-استان هرمزگان)
این مطالعه با هدف بررسی تأثیر پساب مزارع پرورش میگوی تیاب (استان هرمزگان) بر فاکتورهای فیزیکوشیمیایی آب، رسوبات و ساختار جوامع بزرگ بی مهرگان کفزی در مناطق دریافت پساب به مدت یک سال (فروردین 1394 تا فروردین 1395) انجام شد. با توجه به وسعت منطقه و عمق آب، 3 پلات (ورودی آب دریا به خور، قبل از کانال ورودی آب دریا به مزارع پرورش میگو و بعد از کانال خروجی مزارع پرورشی میگو) تعیین و نمونه ها تهیه شد. در این مطالعه، 24 خانواده بزرگ بیمهره کفزی شناسایی شد که شامل 6 رده متعلق به 3 شاخه میباشند. شاخه های کرم های حلقوی (Annelida)، بندپایان (Arthropoda) و نرم تنان (Mollusca) به ترتیب بیش ترین تعداد خانواده و گونه های بزرگ بی مهره کفزی را به خود اختصاص دادند. نتایج حاصل از طبقه بندی بوم شناختی پلات های مورد مطالعه با استفاده از شاخص BENTIX در فصول مختلف نشان داد که پلات هایی که قبل از مزارع پرورش میگو قرار دارند در طبقات بوم شناختی "فاقد آلودگی" تا "نسبتاً آلوده" و پلات هایی که پس از مزارع پرورش میگو و در محل خروجی پساب ها قرار داشتند، در طبقات "اندکی آلوده" تا "به شدت آلوده" طبقه بندی شدند. مهم ترین فاکتورهای تاثیرگذار بر پراکنش بزرگ بی مهرگان کفزی در این مطالعه به ترتیب شامل شوری، میزان نیترات، اکسیژن مورد نیاز بیوشیمیایی (BOD)، فسفات کل رسوب (TP) و میزان کل مواد آلی رسوبات (TOM) بودند. هم چنین در این مطالعه گونه های Capitella capitata و Clymene robusta به عنوان گونه های مقاوم به آلودگی و گونه های Assiminea sp. و Littorina intermedia به عنوان گونه های حساس به آشفتگی و آلودگی معرفی شدند.
http://www.aejournal.ir/article_68383_2c9b979dede4bae25faa85ac2c60310e.pdf
2018-03-21
303
312
بزرگ بی مهرگان کفزی
شاخص زیستی
ارزیابی بوم شناختی
مزارع پرورش میگو
مسلم
شریفی نیا
moslem.sharifinia@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، صندوق پستی: 3995
AUTHOR
محمدرضا
طاهری زاده
taheri.1965@gmail.com
2
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، صندوق پستی: 3995
LEAD_AUTHOR
جاوید
ایمانپور نمین
javidiman@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
احسان
کامرانی
ezas47@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، صندوق پستی: 3995
AUTHOR
Aktaruzzaman, M.; Hossain, M.S.; Fakhruddin, A.N.M.; Uddin, M.J.; Rahman, S.H.; Chowdhury, M.A.Z.; Alam, M.K.; Fardous, Z. and Hossain, M.A., 2013. Water and bottom sediments quality of brackish water shrimp farms in Kaliganj Upazila, Satkhira, Bangladesh. Soil Environment. Vol. 32, pp: 29-35.
1
Anh, P.T.; Kroeze, C.; Bush, S.R. and Mol, A.P., 2010. Water pollution by intensive brackish shrimp farming in south-east Vietnam: Causes and options for control. Agricultural Water Management. Vol. 97, pp: 872-882.
2
Biao, X.; Zhuhong, D. and Xiaorong, W., 2004. Impact of the intensive shrimp farming on the water quality of the adjacent coastal creeks from Eastern China. Marine Pollution Bulletin. Vol. 48, pp: 543-553.
3
Bui, T.D.; Luong-Van, J. and Austin, C.M., 2012. Impact of shrimp farm effluent on water quality in coastal areas of the world heritage-listed Ha Long Bay. American Journal of Environmental Sciences. Vol. 8, No. 2, pp: 104-116.
4
Caeiro, S.; Costa, M.; Ramos, T.; Fernandes, F.; Silveira, N.; Coimbra, A.; Medeiros, G. and Painho, M., 2005. Assessing heavy metal contamination in Sado Estuary sediment: an index analysis approach. Ecological Indicators. Vol. 5, pp: 151-169.
5
Chareonpanich, C.; Montani, S.; Tsutsumi, H. and Nakamura, H., 1994. Estimation of oxygen consumption of a deposit-feeding polychaete Capitella sp. I. Fisheries Science. Vol. 60, pp: 249-251.
6
Clarke, K.R., 1993. Non‐parametric multivariate analyses of changes in community structure. Australian Journal of Ecology. Vol. 18, pp: 117-143.
7
Clarke, K.R. and Gorley, R.N., 2006. PRIMER V6: user manual-tutorial. Plymouth Marine Laboratory.
8
Cognetti, G. and Maltagliati, F., 2000. Biodiversity and adaptive mechanisms in brackish water fauna. Marine Pollution Bulletin. Vol. 40, pp: 7-14.
9
D’Amours, O.; Archambault, P.; McKindsey, C.W. and Johnson, L.E., 2008. Local enhancement of epibenthic macrofauna by aquaculture activities. Marine Ecology Progress Series. Vol. 371, pp: 73-84.
10
Ellison, A.M., 2008. Managing mangroves with benthic biodiversity in mind: moving beyond roving banditry. Journal of Sea Research. Vol. 59, pp: 2-15.
11
Fernandez-Jover, D.; Sanchez-Jerez, P.; Bayle-Sempere, J.; Carratala, A. and Leon, V.M., 2007. Addition of dissolved nitrogen and dissolved organic carbon from wild fish faeces and food around Mediterranean fish farms: implications for waste dispersal models. J of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 340, pp: 160-168.
12
Forbes, T.L.;, Forbes, V.E. and Depledge, M.H., 1994. Individual physiological responses to environmental hypoxia and organic enrichment: implications for early soft-bottom community succession. Journal of Marine Research. Vol. 52, pp:1081-1100.
13
Gál, D.; Szabó, P.; Pekár, F. and Váradi, L., 2003. Experiments on the nutrient removal and retention of a pond recirculation system. Hydrobiologia. Vol. 506, pp: 767-772.
14
Gillett, R., 2008. Global study of shrimp fisheries. Food and Agriculture Organization of the United Nations Rome.
15
Gräslund, S. and Bengtsson, B.E., 2001. Chemicals and biological products used in south-east Asian shrimp farming, and their potential impact on the environment-a review. Science of the Total Environment. Vol. 280, pp: 93-131.
16
Grigorakis, K. and Rigos, G., 2011. Aquaculture effects on environmental and public welfare. The case of Mediterranean mariculture. Chemosphere. Vol. 85, pp: 899-919.
17
ImanpourNamin,J.; Sharifinia, M. and Bozorgi Makrani, A., 2013. Assessment of fish farm effluents on macro invertebrates based on biological indices in Tajan River (north Iran). Caspian Journal of Environmental Sciences. Vol. 11, pp: 29-39.
18
Joffre, O.M. and Bosma, R.H., 2009. Typology of shrimp farming in Bac Lieu Province, Mekong Delta, using multivariate statistics. Agriculture, Ecosystems and Environment. Vol. 132, pp: 153-159.
19
Kalantzi, I.; Shimmield, T.; Pergantis, S.; Papageorgiou, N.; Black, K. and Karakassis, I., 2013. Heavy metals, trace elements and sediment geochemistry at 4 Mediterranean fish farms. Science of the total environment. Vol. 444, pp: 128-137.
20
Lacerda, L.; Soares, T.; Costa, B. and Godoy, M., 2011. Mercury emission factors from intensive shrimp aquaculture and their relative importance to the Jaguaribe River Estuary, NE Brazil. Bulletin of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 87, pp: 657-661.
21
Murugesan, P.; Ajithkumar, T.; Khan, S.A. and Balasubramanian, T., 2009. Use of benthic biodiversity for assessing the impact of shrimp farming on environment. J of Environmental Biology. Vol. 30, No. 5, pp: 865-870.
22
Nebra, A.; Alcaraz, C.; Caiola, N., Muñoz Camarillo, G. and Ibáñez, C., 2016. Benthic macrofaunal dynamics and environmental stress across a salt wedge Mediterranean estuary. Marine environmental research. Vol. 117, pp: 21-31.
23
Nickell, L.A.; Black, K.D.; Hughes, D.J.; Overnell, J.; Brand, T.; Nickell, T.D.; Breuer, E. and Harvey,
24
S.M., 2003. Bioturbation, sediment fluxes and benthic community structure around a salmon cage farm in Loch Creran, Scotland. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 285, pp: 221-233.
25
Nogueira, M.; Pinto, F.D.R.; Nunes, A.P.; Guariz, C.S.L. and Amaral, L.A.d., 2014. Effluents quality during the grow out phase of the amazon shrimp macrobrachium amazonicum. Ciência animal Brasileira. Vol. 15, pp: 159-167.
26
Páez Osuna, F., 2001. The environmental impact of shrimp aquaculture: causes, effects, and mitigating alternatives. Environmental Management. Vol. 28, pp: 131-140.
27
Pearson, T. and Rosenberg, R., 1978. Macrobenthic succession in relation to organic enrichment and pollution of the marine environment. Oceanogr. Mar. Biol. Ann. Rev. Vol. 16, pp: 229-311.
28
Ribeiro, L.F.; Eça, G.F.; Barros, F. and Hatje, V., 2016. Impacts of shrimp farming cultivation cycles on macrobenthic assemblages and chemistry of sediments. Environmental Pollution. Vol. 211, pp: 307-315.
29
Serrano-Grijalva, L.; Sánchez-Carrillo, S.; Angeler, D.; Sánchez Andrés, R. and Álvarez Cobelas, M., 2011. Effects of shrimp-farm effluents on the food web structure in subtropical coastal lagoons. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 402, pp: 65-74.
30
Simboura, N. and Zenetos, A., 2002. Benthic indicators to use in ecological quality classification of Mediterranean soft bottom marine ecosystems, including a new biotic index. Mediterranean Marine Science. Vol. 3, pp: 77-111.
31
Strickland, J.D. and Parsons, T.R., 1972. A practical handbook of seawater analysis. Fisheries Research Board of Canada, Ottawa. 167 p.
32
Taherizadeh, M. and Sharifinia, M., 2015. Applicability of ecological benthic health evaluation tools to three subtropical estuaries (Azini, Jask & Khalasi) from the Iranian coastal waters. Environmental earth sciences. Vol. 74, pp: 3485-3499.
33
Tomassetti, P.; Persia, E.; Mercatali, I.; Vani, D.; Marussso, V. and Porrello, S., 2009. Effects of mariculture on macrobenthic assemblages in a western Mediterranean site. Marine Pollution Bulletin. Vol. 58, pp: 533-541.
34
Veuthey, S. and Gerber, J.F., 2012. Accumulation by dispossession in coastal Ecuador: Shrimp farming, local resistance and the gender structure of mobilizations. Global Environmental Change. Vol. 22, pp: 611-622.
35
Vita, R.; Marin, A.; Jiménez‐Brinquis, B.; Cesar, A.; Marín Guirao, L. and Borredat, M., 2004. Aquaculture of Bluefin tuna in the Mediterranean: evaluation of organic particulate wastes. Aquaculture rese. Vol. 35, pp: 1384-1387.
36
Zhulay, I.; Reiss, K. and Reiss, H., 2015. Effects of aquaculture fallowing on the recovery of macrofauna communities. Marine pollution bulletin. Vol. 97, pp: 381-390.
37
ORIGINAL_ARTICLE
پراکنش دو گونه Branchipodopsis affinis و Branchinecta orientalis در منطقه بازرگان، ماکو
آبشش پایان بزرگ از پراکنش جهانی برخوردار بوده و می توانند در مکان های دور دست روی کره زمین گسترش یابند. در ایران، همانند بسیاری ازنقاط دنیا، الگوهای تنوع زیستی، پراکنش و وضعیت حفظ منابع طبیعی این گروه جانوری کم تر مورد شناسایی قرار گرفته است. در همین راستا منطقه بازرگان، ماکو، در استان آذربایجان غربی با هدف بررسی پراکنش آبشش پایان بزرگ در بهار سال 94 مورد بررسی قرار گرفت. دو گونه آنوستراکا از راسته آبشش پایان بزرگ شامل Branchinecta orientalisو Branchipodopsis affinis از منطقه جمع آوری گردیدند. گونه B. orientalis قبلاً از مناطق هم جوار در ایران گزارش گردیده بود، اما گونه B. affinisبرای اولین بار گزارش شد. براساس نتایج حاصل می توان دریافت که عوامل محیطی نقش اصلی در توزیع و پراکنش و حضور گونه های خاص در مقیاس محلی و منطقه ای را به عهده دارند. این گونه ها در منطقه مورد مطالعه با از دست دادن و تخریب زیستگاه ها توسط فعالیت های مربوط به زهکشی، کشاورزی و یا شور شدن مورد تهدید هستند. این اثرات منفی با وجود خشک سالی سراسری تشدید می شوند.
http://www.aejournal.ir/article_63816_f3e02508157ab9ec5c8ebc436fe4f235.pdf
2018-03-21
313
320
آنوستراکا
Branchinecta orientalis
Branchipodopsis affinis
ماکو و بازرگان
بهروز
آتشبار کنگرلویی
atashbarb@gmail.com
1
گروه اکولوژی و ارزیابی ذخایر آبزیان، پژوهشکده مطالعات دریاچه ارومیه، دانشگاه ارومیه، صندوق پستی: 165
LEAD_AUTHOR
Agh, N., 2007. Characterization of Artemia populations from Iran. PhD thesis, Ghent University, Belgium. 148 p.
1
Atashbar, B.; Agh, N. and Belajal, L., 2014. Diversity and distribution patterns of large branchiopods (Crustacea: Branchiopoda) in temporary pools (Iran). Journal of Arid Environments. Vol. 111, pp: 27-34.
2
Beladjal, L. and Mertens, J., 2009. Diaspore dispersal of Anostraca by flying insects. Journal of Crustacean Biology. Vol. 29, pp:266-268.
3
Bohonak, A.J. and Roderick, G.K., 2001. Dispersal of invertebrates among temporary ponds: Are genetic estimates accurate? Israel Journal of Zoology. Vol. 47, pp: 367-386.
4
Boven, L.; Vanschoenwinkel, B.; De Roeck, E.R.M.; Hulsmans, A. and Brendonck, L., 2008. Diversity and distribution of large branchiopods in Kiskunsag (Hungary), in relation to local habitat and spatial factors: implications for their conservation. Marine and Freshwater Research. Vol. 59, pp: 940-950.
5
Brehm, V., 1954. Filopodos de Persia recolectados por el Dr. K. Lindberg. Publicaciones del Instituto de Biologia Aplicada. Vol. 16, pp: 121-125.
6
Brendonck, L. and De Meester, L., 2003. Egg banks in freshwater zooplankton: evolutionary and ecological archives in the sediment. Hydrobiologia. Vol. 491, pp: 65-84.
7
Brendonck, L. and Williams, W.D., 2000. Biodiversity in wetlands of dry regions (drylands). In: Biodiversity in wetlands: assessment, function and conservation. Gopal, B., Junk, W.J. and Davis, J.A. (EDS.). Backhuys Publishers. Leiden. pp: 181-194.
8
Brendonck, L.; Centeno, M.D. and Persoone, G., 1996. The influence of processing and temperature conditions on hatching of resting eggs of Streptocephalus proboscideus. Hydrobiologia. Vol. 320, pp: 99-105.
9
Brendonck, L.; Rogers, D.C.; Olesen, J.; Weeks, S. and Hoeh, W.R., 2008. Global diversity of large branchiopods (Crustacea: Branchiopoda) in freshwater. Hydrobiologia.Vol. 595, pp: 167-176.
10
Daday, E., 1910. Monographie systématique des Phyllopodes Anostracés. Annales De Sciences Naturelles Zoologie. Vol. 11, pp: 91-489.
11
De Roeck, E.R.; Vanschoenwinkel, B.J.; Day, J.A.; Xu, Y.; Raitt, L. and Brendonck, L., 2007. Conservation status of large branchiopods in the Western Cape, South Africa. Wetlands. Vol. 27, pp: 162-173.
12
De Roeck, E.R.; Waterkeyn, A. and Brendonck, L., 2010. Life-history traits of Streptocephalus purcelli Sars, 1898 (Branchiopoda, Anostraca) from temporary waters with different phenology. Water Research Commission South Africa. Vol. 36, pp: 323-328.
13
Eaton, A.D.; Clesceri, L.S. and Greenberg, A.E., 1995. Standard Methods for Examination of Water and Wastewater, 19th ed. American Public Health Association, Washington, D.C. pp: 38-39.
14
Green, A.J. and Figuerola, J., 2005. Recent advances in the study of long-distance dispersal of aquatic invertebrates via birds. Diversity and Distributions. Vol.11, pp: 149-156.
15
Green, A.J.; Sanchez, M.I.; Amat, F.; Figuerola, J.; Hontoria, F.; Ruiz, O. and Hortas, F., 2005. Dispersal of invasive and native brine shrimps Artemia (Anostraca) via waterbirds. Limnology and Oceanography. Vol. 50,
16
pp: 737-742.
17
Hairston, N.G., 1996. Zooplankton egg banks as biotic reservoirs in changing environments. Limnology and Oceanography. Vol. 41, pp: 1087-1092.
18
Hancock, M.A. and Timms, B.V., 2002. Ecology of four turbid clay pans during a filling-drying cycle in the Paroo, semi-arid Australia. Hydrobiologia. Vol. 479, pp: 95-107.
19
Holland, T.A. and Jenkins, D.G., 1998. Comparison of processes regulating zooplankton assemblages in new freshwater pools. Hydrobiologia. Vol. 388, pp: 207-214.
20
Holt, R.D., 1993. Ecology at the mesoscale: the influence of regional processes on local communities. In: Species diversity in ecological communities: historical and geographical perspectives. Rickleffs, R.E. and Schulter, D. (EDS). University of Chicago Press. 310 p.
21
Hulsmans, A.; Vanschoenwinkel, B.; Pyke, C.; Riddoch, B.J. and Brendonck, L., 2008. Quantifying the hydroregime of a temporary pool habitat: a modelling approach for ephemeral rock pools in SE Botswana. Ecosystems. Vol. 11, pp: 89-100.
22
Janecke, B.B.; Du Preez, P.J. and Venter, H.J.T., 2003. Vegetation ecology of the pans (playas) of Soetdoring Nature Reserve, Free State Province. African Journal of Botany.Vol. 69, pp: 401-409.
23
King, J.L.; Simovich, M.A. and Brusca, R.C., 1996. Species richness, endemism and ecology of crustacean assemblages in northern California vernal pools. Hydrobiologia. Vol. 328, pp: 85-116.
24
Mura, G. and Azari Takami, G., 2000. A contribution to the knowledge of the anostracan fauna of Iran. Hydrobiologia. Vol. 441, pp: 117-121.
25
Nusch, E.A., 1980. Comparison of different methods for chlorophyll and phaeopigment determination. Archive für Hydrobiology. Vol. 14, pp: 14-36.
26
Thiéry, A., 1996. Large branchiopods (Crustacea: Anostraca, Notostraca, Spinicaudata, Laevicaudata) from temporary inland waters of the Arabian Peninsula. Fauna Saudi Arabia. Vol. 15, pp: 37-98.
27
Vanschoenwinkel, B.; Hulsmans, A.; De Roeck, E.; De Vries, C.; Seaman, M. and Brendonck, L., 2009. Community structure in temporary freshwater pools: disentangling effects of habitat size and hydroregime and the impact of dispersal mode. Freshwater Biology. Vol. 54, pp: 1487-1500.
28
Waterkeyn, A.; Grillas, P.; De Roeck, E.R.M.; Boven, L. and Brendonck, L., 2009. Assemblage structure and dynamics of large branchiopods in Mediterranean temporary wetlands: patterns and processes. Limnology and oceanography, methods. Vol. 54, pp: 1256-1270.
29
Williams, D.D., 1997. Temporary ponds and their invertebrate communities. Aquatic conservation: marine and freshwater ecosystems. Vol. 7, pp: 105-117.
30
Williams, D.D., 2006. The Biology of temporary waters. Oxford University Press, Oxford. 337 p.
31
Williams, P.; Whitfield, M.; Biggs, J.; Bray, S.; Fox, G.; Nicolet, P. and Sear, D., 2004. Comparative biodiversity of rivers, streams, ditches and ponds in agricultural landscape in southern England. Biological Conservation. Vol. 115, pp: 329-341.
32
Brendonck, L. and Riddoch, B.J., 2001. Hatching characteristics of the fairy shrimp Branchipodopsis wolfi in relation to the stochastic nature of its habitat, desert rock pools. Verh International Verein Limnology. Vol. 27, pp: 3931-3935.
33
Abatzopoulos, T.J.; Agh, N.; Van Stappen, G.; Razavi Rouhani, S.M. and Sorgeloos, P., 2006. Artemia sites in Iran. Journal of Marine Biology. Vol. 86, pp: 299-307.
34
Manaffar, R., 2012. Genetische diversiteit van Artemia populaties in Lake Urmia, Iran. PhD thesis, Ghent University, Belgium. 160 p.
35
Fanid, L.; Seidgar, M. and Azari Takami, G., 2007. A comparative SEM morphological study on the egg shell in some Anostracans (Cyustacea: Branchiopoda) from East Azerbaijan Province of Iran. Tranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 7, pp: 101-110.
36
Brtek, J.; Forrò, L. and Pony, J.E., 1984. Contribution to the knowledge of the Branchiopoda (Crustacea) fauna of Mongolia. Annales Historico-Naturales Musei Nationalis Hungarici. Vol. 76, pp: 91-99.
37
Vanschoenwinkel, B.; Waterkeyn, A.; Vandecaetsbeek, T.; Pineau, O.; Grillas, P. and Brendonck, L., 2008. Zooplankton dispersal by large terrestrial mammals- a case study on wild boar (Sus scrofa) in Southern France. Freshwater Biology. Vol. 53, pp: 2264-2273.
38
Beladjal, L.; Dierckens, K. and Mertens, J., 2007. Dispersal of fairy shrimp Chirocephalus diaphanous (Branchiopoda: Anostraca) by the trout (Salmo trutta). Journal of Crustacean Biology. Vol. 27, pp: 71-73.
39
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تنوع و فراوانی شاخه های زئوپلانکتونی در تالاب انزلی
تالاب انزلی زیستگاه مناسبی برای تخم ریزی، تغذیه و پرورش لارو بسیاری از موجودات آبزی به ویژه ماهیان محسوب می شود و موجودات زئوپلانکتونی به عنوان اولین مصرف کننده دراین اکوسیستم آبی غذای مناسبی برای بسیاری از لارو ماهیان می باشند. مطالعه وضعیت زئوپلانکتونی تالاب انزلی در 10 ایستگاه به صورت ماهانه طی اردیبهشت 1393 الی فروردین 1394 مورد بررسی قرار گرفتند. نمونه برداری با تیوپ (PVC) به میزان 30 لیتر و عبور از تور پلانکتونی 30 میکرون صورت گرفت. طبق نتایج حاصله 72 جنس به ترتیب از شاخه های Actinopoda، Rhizopoda، Ciliophora، Rotatoria،Arthropoda ، Gastrotricha، Mollusca، Tardigrada، Nematoda، Porifera و Annelida شناسایی شدند. نتایج نشان داد که حداکثر میانگین سالانه تراکم زئوپلانکتونی با 9667± 12383 عدد در لیتر ایستگاه کومه شیجان و حداقل تراکم در ایستگاه مرکز تالاب غرب با 312 ± 1539 عدد در لیتر و تراکم زئوپلانکتون در فصل تابستان بیش از سایر فصول بوده است. به طورکلی شاخه Rotatoria 59/24 درصد، شاخه Rhizopoda 8/14 درصد، شاخه Ciliophora 29/70 درصد و فوق رده Copepoda2/6 درصد از تراکم زئوپلانکتونی را تشکیل داده اند. طبق نتایج جمعیت زئوپلانکتون نسبت به مطالعات گذشته افزایش یافته است. طبق آنالیز آماری کروسکال والیس تراکم زئوپلانکتون در ایستگاهها، ماه ها و فصول مختلف معنی دار نبوده (0/05<p) اما شاخه ها با هم اختلاف معنی دار داشته اند (0/05>p). به طورکلی نتایج نشان داد که تالاب انزلی در یک شرایط یوتروفی به سر می برد.
http://www.aejournal.ir/article_63812_3b3844cee5328d8b61e2ff0327748d81.pdf
2018-03-21
321
328
زئوپلانکتون
تالاب انزلی
تراکم
تنوع
مریم
فلاحی کپورچالی
m_fallahi2011@yahoo.com
1
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
LEAD_AUTHOR
جلیل
سبک آرا
jsabkara@yahoo.com
2
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
علی
عابدینی
aabedinim@yahoo.com
3
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
علیرضا
ولی پور
valipour32@yahoo.com
4
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
نجات خواه معنوی، پ.؛ پاسندی، ع.؛ سقلی، م.، بهشتی نیا، ن. و میرشکار، د.، 1388. بررسی میزان نیترات و فسفات در حوضه جنوب شرقی دریای مازندران در فصل بهار و تابستان. مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. دوره 4، شماره 3، صفحات 12 تا 19.
1
فائو . 1369. توان باروری تالاب انزلی و بررسی ذخائر ماهی در آن. معاونت تحقیقات و آموزش شیلات ایران، بندرانزلی. 19 صفحه.
2
فلاحی، م.، 1372. بررسی پراکنش و بیوماس زئوپلانکتون های تالاب انزلی(آبکنار). پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده علوم فنون دریایی تهران. دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال. 198 صفحه.
3
فلاحی،م.وخداپرست،س.ح.،1378. هیدرولوژی و هیدروبیولوژی تالاب انزلی. مرکز تحقیقات شیلات گیلان، بندر انزلی. 113 صفحه.
4
فلاحی، م.؛ مطلبی، ع.؛ سبک آرا، ج.؛ مکارمی، م.؛ خطیب، س.؛ خداپرست، س.ح.؛ میرزاجانی، ع.؛ ولی پور،ع.؛ خوشحال، ج.؛ زحمتکش، ی.؛ افشارچی، ح.؛ گل مروی، د.؛ قائمی، آ. و قدیری ابیانه، م.، 1395. گزارش نهایی طرح مطالعه ساختار زئوپلانکتونی تالاب انزلی. مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 42صفحه.
5
مکارمی، م.؛ سبک آرا، ج.؛ محمدجانی، ط.؛ فلاحی، م.؛ اولاد ربیعی، ح. و نظامی بلوچی، ش.، 1386. گزارش نهایی طرح شناسایی گونه های و تهیه اطلس پلانکتونهای تالاب انزلی و نواحی ساحلی دریای خزر 1379-1376. موسسه تحقیقات شیلات ایران. تهران. 81 صفحه.
6
مهندسین مشاور یکم.1367. مطالعات گام اول طرح جامع احیای تالاب انزلی. جلد هفتم، لیمنولوژی. انتشارات جهاد سازندگی استان گیلان. 319 صفحه.
7
ولادیمیرسکایا، ا. و کوراشووا، ا.، 1357. تحقیق و مطالعه موجودات پلانکتون از طرف گروه کارشناسان اتحاد جماهیر شوروی در تالاب انزلی، رودخانه ها و قسمت های جنوبی دریای خزر. سازمان محیط زیست ایران، بندر انزلی.
8
میرزاجانی، ع.؛ حسن زاده کیابی، ب.؛ جمالزاد، ف.؛ فلاحی، م.؛ عبداله پور، ح.؛ پورغلامی مقدم، ا.؛ مکارمی، م.؛ خداپرست، س.ح.؛ وطن دوست، م.؛ بابایی، ه.؛ عباسی، ک.؛ سبک آرا، ج.؛ دادای قندی،ع.؛ قانع ساسانسرایی،ا. و حسین جانی، ع.، 1388. بررسی لیمنولوژیکی تالاب انزلی برمبنای مطالعات ده ساله با استفاده از سامانه جغرافیائی GIS. مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 101 صفحه.
9
Bagheri,S.; Sabkara, J.; Mirzajani, A.; Khodaparast, S.H.; Yosefzad, E. and Yeok, F.S., 2013. List of Zooplankton Taxa in the Caspian Sea Waters of Iran. Journal of Marine Biology. Vol. 2013, Article ID 134263, 7 p.
10
Carling, K.J.; After, I.M.; Pellam, M.R.; Bouchard, A.M. and Mihuc, T.B., 2004. A guide to the zooplankton of Lake Champlain. Scientia Discipulorum. Journal of Undergraduate Research. Vol. 1, pp: 1-29.
11
Costanza, R.; Farber, S.C. and Maxwell, J., 1989. The valuation andmanagement of wetland ecosystems. Ecological Economics. Vol. 1, pp: 335-362.
12
Ferdous, Z. and Muktadir, A.K., 2009. A Review: Potentiality of Zooplankton as Bioindicator. Am. J. Applied Sci. Vol. 6, pp: 1815-1819.
13
Gordon, I., 1971. Biographical note on Edward John Miers, F.Z.S., F.L.S. (1851-1930) Res.Crust. Vol. 4, pp: 123-132.
14
Golmarvi, D.; Kapourchali, M.F.; Moradi, A.M.; Fatemi, M. and Nadoshan, R.M., 2017. Influence of Physico hemical Factors, Zooplankton Species Biodiversity and Seasonal Abundance in Anzali International Wetland, Iran. Open Journal of Marine Science. Vol. 7, pp: 91-99.
15
Hall,G.E.,1971. Reservoir Fisheries and Limnology.American Fisheries Society. Washington, D.C. 520 P.
16
Holčík, J. and Oláh, J., 1992. Fish, fisheries and water quality in Anzali Lagoon and its watershed. Report prepared for the project Anzali Lagoon productivity and fish stock investigations. Food and Agriculture Organization, Rome, FI: UNDP/IRA/88/001 Field Document 2:x + 109 p.
17
Jica. 2004. The Study on Integrated Management for Ecosystem Conservation of the Anzali Wetland in the Islamic Republic of Iran. Draft final report Vol. II: Maim report. Nippon Koei Co. 721 P.
18
Kimbal, K.D. and Kimbal, S.F., 1974. The limnology of Anzali mordab and study of eutrophcation problems. Iranian Department of the invironment, human invironment division, technical report. Bandar anzali, Iran.42 p.
19
Krovchinsky, N. and Smirnov, N., 1994. Introduction of Cladocera. Universiteit gent. 129 P.
20
Omori, M. and Ikea, T. 1984. Methode in Marine Zooplankton ecology. John Wilay and Sons, United ststes. pp: 1-89.
21
Pontin, R.M., 1978. A key to the freshwater planktonic and semiplanktonic rotifera of the British Isles: Freshwater Biological Association Scientific Publication. No 38.
22
Shannon,C.,1948. A mathematical theory of communication. Bell Systems Technological Journal. Vol. 27, pp: 379-423.
23
Sipkay, C.; Kiss, K. T.; Vadadi-Fülöp, C. and Hufnagel, L., 2009. Trends in research on the possible effects of climate change concerning aquatic ecosystems with special emphasis on the modelling approach. Applied Ecology and Environmental Research. Vol. 17, No. 2, pp: 171-198.
24
Sunkard, B.N., 2005. Diversity of zooplankton in Rakasakoppa Reservoir of Belgum, North Karnataka in: Ecolory of Plankton (Edi. Kumar, A.). Daya Publishing House, New Delhi, India. pp: 147-152.
25
Throp, J.H. and Covich, A.P., 2001. An overview of freshwater habitats. In: Throp, J. H. and Covich, A. P. (eds) Ecology and classification of north america fresh invertebrates. Academ press. San diego, California. pp:19-42.
26
Verma, P.S. and Agarwal, V.K., 2007. Environmental Biology: Principles of Ecology. 11th Reprinted Edition, S. Chand & Co. Ltd., India. pp: 3-500.
27
Wiliams, L.G., 1966. Dominant planktonic rotifers of majorwater of the united states. Limnol oceangr. Vol. 11, pp: 83-91.
28
Witty, L.M., 2004. Practical guide to identifying freshwater crustacean zooplankton. Cooperative Freshwater Ecology Unit 2004, 2nd edition.50 p.
29
Yıldız, Ş.; Altındağ, A. and Borga Ergِnül, M., 2007. Seasonal fluctuations in the zooplankton composition of a eutrophic lake: Lake Marmara (Manisa, Turkey). Turk. J. Zool. Vol. 31, pp: 121-126.
30
Zare, M.R.; Kamali, M.; Kapourchali, M.F.; Bagheri, H.; Bagheri, M.K.; Abedini, A. and Pakzad, H.R., 2016. Investigation of 235U, 226Ra, 232Th, 40K, 137Cs, and heavy metal concentrations in Anzali international wetland using high-resolution gamma-ray spectrometry and atomic absorption spectroscopy. Environ Sci Pollut Res. Vol. 23, No. 4, pp: 3285-3299.
31
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تراکم و شناسایی جوامع بی مهرگان کفزی دریاچه سد کمال صالح اراک
جوامع بزرگ بیمهرگان کفزی در رسوبات کف بستر اکوسیستمهای آبی ساکن هستند و میتوانند به عنوان شاخص برای ارزیابی کیفیت محیطهای آبی استفاده شوند. به منظور ارزیابی جوامع کفزی دریاچه سد کمال صالح استان مرکزی، نمونهبرداری به صورت فصلی در 5 ایستگاه انجام گردید. نمونهبرداری با استفاده از دستگاه نمونهبردار رسوب با ابعاد 20×20 سانتیمتر انجام شد. درجه حرارت آب سطح دریاچه کمینه 7/6 و بیشینه 21/2 درجه سانتی گراد به ترتیب در فصل زمستان و تابستان و غلظت اکسیژن محلول درآب های سطحی دریاچه طی دوره بررسی با میانگین 1/5±8/07 میلیگرم در لیتر در محدوده کمینه 6/44 میلیگرم بر لیتر و بیشینه 10/12میلیگرم در لیتر به ترتیب در فصول تابستان و زمستان در نوسان بود. بیشینه عمق آب در فصل زمستان برابر 18/2 و کمینه آن در پاییز برابر 14 متر و میانگین آن برابر 16/8 متر اندازه گیری شد. در این مطالعه جنسهایی از خانوادههای Naididae، Chironomidae، Viviparidae، Valvatidae، Coenagrionidae و Lymnaeidae مشاهده شد. جنس غالب در تمام فصول نمونهبرداری و در تمامی ایستگاهها توبیفیکس گزارش شد. بیشینه تراکم کفزی مشاهده شده 18/39±115/64 (تعداد در متر مربع) و کمینه آن 13/63±34/22 به ترتیب در بهار و پاییز گزارش شد. مقدار شاخص تنوع در دریاچه سد کمال صالح در محدوده حداکثر 0/88 و حداقل 0/29 متغیر بود. بررسی شاخص تنوع شانون نشان داد که بیش ترین و کم ترین مقدار این شاخص به ترتیب در بهار و زمستان بوده است. هم چنین بیش ترین و کم ترین میزان شاخص غالبیت سیمپسون به ترتیب در پائیز و زمستان و میزان شاخص غنای مارگالف به ترتیب در تابستان و زمستان بود. تنوع کم جانوران کفزی دریاچه را میتوان به عدم بستر مناسب برای استقرار و کمبود مواد مغذی به دلیل جوان بودن دریاچه نسبت داد. به نظر میرسد ساختار بستر، میزان مواد مغذی و فشار چرا از عوامل مؤثر بر سکنی گزینی کفزیان در دریاچه سد کمال صالح اراک میباشند.
http://www.aejournal.ir/article_64956_0e35983df8560bfb599c23db609646bc.pdf
2018-03-21
329
336
سد کمال صالح
بزرگ بیمهرگان کفزی
کیفیت آب
ارزیابی
علی
لطفی
lotfi@cc.iut.ac.ir
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان
LEAD_AUTHOR
مژگان
زارع شهرکی
mojgan.shahraki@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان
AUTHOR
احمدی،م.ر.؛ کرمی،م.وکاظمی، ر.،1379 . تعیین زیتوده و برآورد تولید در رودخانههای آغشت و کردان. مجله منابع طبیعی ایران. سال 53، شماره 1، صفحات 3 تا 20.
1
باقری، س.ع،ش.، 1381. بررسی پراکنش وتعیین توده زنده بیمهرگان کفزی دریاچه ارس. مجله علمی شیلات ایران. سال 11، شماره 4، صفحات 1 تا 10.
2
پروندی، ش.؛ عبدلی، ا. و هاشمی، س.ح.، 1395. ارزیابی زیستی رودخانه جاجرود با استفاده از ساختار جمعیت ماکروبنتوزها. نشریه علمی بوم شناسی آبزیان. سال 6، شماره 1، صفحات 20 تا 32.
3
جلیلی، م.؛ نگارستان، ح. و صفاییان، ش.، 1388. بررسی فون ماکروبنتیک بخش جنوب غربی تالاب انزلی و ارتباط آنها با مواد آلی بستر، مجله اقیانوس شناسی. سال 1، شماره 4، صفحات 11 تا 19.
4
رهبری، ک.، 1384. مطالعه تأثیر برخی از پارامترهای زیست محیطی بر روی اجتماعات ماکروبنتیک در رودخانـه کارون از بازه ملاثانی تا داروخوین، پایان نامه کارشناسی ارشد محیط زیست، واحد علوم وتحقیقات اهواز. صفحات 47 تا 52.
5
زارع، م.، 1393. ارزیابی کیفیت آب دریاچه سد زایندهرود براساس شاخصهای زیستی. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه صنعتی اصفهان. 93 صفحه.
6
صلواتیان، م.؛ عبدالله پوربیریا، ح.؛ نطامی بلوچی، ش.؛ مکارمی، م. و پورغلامی مقدم، م.، 1389. ترکیب گونهای و تعیین تراکم فیتوپلانکتونی در دریاچه پشت سد لار. مجله علمی تخصصی تالاب دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 2، شماره 3، صفحات 26 تا 38.
7
محبوبی صوفیانی، ن. و نادری، غ.ر.، 1379. کلید شناسایی بی مهرگان نهرها و رودخانهها. جهاد دانشگاهی دانشگاه صنعتی اصفهان. 131صفحه.
8
میرزاجانی، ع.ر.؛ عباسی، ک.؛ سبکآرا، ج.؛ مکارمی، م.؛ عابدینی، ع. و صیادبورانی،م.، 1389. لیمنولوژی دریاچه الیگومزوتروف تهم در استان زنجان. مجله زیست شناسی ایران. جلد 25، شماره 1، صفحات 74 تا 89.
9
یوسف زاد، ا.؛ نظامی بلوچی، ش.؛ خارا، ح. و میرزاجانی،ع.ر.، 1393. بررسی توان تولید موجودات کفزی جهت آبزی پروری در دریاچه گلابر زنجان. نشریه توسعه آبزی پروری. سال 8، شماره 1، صفحات 83 تا 93.
10
Alves, R.G. and Lucca, J.V., 2000. Oligochaeta (Annelida: Clitellata) como indicador de poluição orgânica em dois córregos pertencentes à Bacia do Ribeirão do Ouro Araraquara (São Paulo, Brasil). Brazilian. Journal of Ecology. Vol. 4, No. 1-2, pp: 112-117.
11
Dillon, J.R., 2000. The ecology of freshwater mollusks. Cambridge University Press, Cambridge, UnitedKingdom. 532 p.
12
Gardner, T.J., 1993. Grazing and the distribution of sediment particle sizes in artificial stream systems. USA. Hydrobiologia. Vol. 252, No. 2, pp: 127-132.
13
Geoffrey, R.S.; Vaala, D.A. and Haley, A.D., 2001. Distribution and abundance of macroinvertebrates within two temporary ponds. Hydrobiologia. Vol. 497, pp:161-167.
14
Heino, J., 2000. Lentic macroinvertebrate assemblage structure along gradients in spatial heterogeneity, habitat size and water chemistry. Hydrobiologia. Vol. 418, No. 1,pp: 229-242.
15
Hilsenhoff, W.L., 1988. Rapid field assessment of organic pollution with a family-level biotic index. Journal of the North American Benthological Society. Vol. 7, No. 1,pp: 65-68.
16
Lonkar, S.S. and Kedar, G.T., 2014. Macrozoobenthic diversity of three urban lakes of Nagpur, Central India. International Journal of Advanced Research. Vol, 2. No, 4. pp: 1082-1090.
17
James, H.J. and Thorpalan, A.P., 1991. Ecology and classification of North American Freshwater invertebrates. Academic Press. San Diego. USA. 1703 p.
18
Kaster, J.L.; Klump, J.V.; Meyer, J.; Krezoski, J. and Smith, M.E., 1984. Comparison of defecation rates of Limnodrilus hoffmeisteri Claparede (Tubificidae) using two different methods. Hydrobiologia. Vol. 111, No. 3,pp: 181-184.
19
Lasinio, G.J.; Pollice, A.; Marcon, É. and Fano,E.A., 2017. Assessing the role of the spatial scale in the analysis of lagoon biodiversity. A case-study on the macrobenthic fauna of the Po River Delta. Ecological Indicators. Vol. 80, pp: 303-315.
20
Li, B.; Li, X.; Bouma, T.J.; Soissons, L.M.; Cozzoli, F.; Wang, Q.; Zhou, Z. and Chen, L., 2017. Analysis of macrobenthic assemblages and ecological health of Yellow River Delta, China, using AMBI & M-AMBI assessment method. Marine Pollution Bulletin.
21
Margalef, R., 1983. Limnologia. Barcelona: Ediciones Omega. 1009 p.
22
Mandawille, S.M., 2002. Benthic macroinvertebrates in freshwaters taxa tolerance values, metrics and protocols. Chapter Ш. Project H-1. (Nova Scotia Soil & Water conservation Society of Metro Halifax).120 p.
23
Pinder, L.C.V., 1977. The Chironomidae and their ecology in chalk stream. Annual Report, Freshwater Biological Association. Vol. 4, pp: 62-69.
24
Rosenberg, D.M. and Resh, V.H., 1994. Fresh water biomonitoring and benthic macroinvertebrates. Wiley. New York. 1993 p.
25
Salmaso, N.; Morabito, G.; Mosello, R.; Garibaldi, L.; Simona, M.; Buzzi, F. and Ruggiu, D., 2003. A synoptic study of phytoplankton in the deep lakes south of the Alps (lakes Garda, Iseo, Como, Lugano and Maggiore. Journal of Limnology. Vol, 62. No, 2. pp: 207- 227.
26
Sarang, N. and Sharma, L.L., 2009. Macrobenthic fauna as bioindicator of water quality in Kishore Sagar Lake, Kota (Rajasthan) India 13th Conference Wuhan 2009 Conference Papers.
27
Shannon, C.E. and Weaver, W., 1963. The Mathematical theory of communications. University of Illinois Press. Urbana, USA. 667 P.
28
Storey, A.W., 1986. Population dynamics, production and ecology of three species of epiphytic Chironomid. Ph. D thesis. University of Reading. UK.
29
Tall, L.; Méthot; G. Armellin, A. and Pinel-Alloul,B., 2008. Bioassessment of Benthic Macroinvertebrates in Wetland Habitats of Lake Saint-Pierre (St. Lawrence River). Journal of Great Lakes Research. Vol. 34. pp: 599-614.
30
Thorp, J.H. and Covich, A.P., 2010. Ecology and Classification of North American Freshwater Invertebrates. Elsevier Inc. Boston. pp: 587-657.
31
Williams, K.A., 1981. Population dynamics of epiphytic Chironomid larvae in a chalk stream. Ph. D thesis. University of Reading. UK.
32
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی گونه (Callista umbonella (bivalve: Veneridae با تاکید بر مطالعات مورفولوژیک و مولکولی
مطالعه حاضر به بررسی شناسایی دقیق دوکفهای Callista umbonella در ساحل نایبند با استفاده از مطالعات ریختشناسی و مولکولی پرداخته است. بدین منظور در اردیبهشت سال 1395 از دوکفهایهای این گونه نمونه برداری صورت گرفت. جهت ثبت ویژگی های مورفولوژیک مانند شکل کفه ها، تزیینات روی کفهها، شکل آمبو، موقعیت، تعداد و شکل دندانهای لولایی و رنگ عکس برداری انجام شد. جهت مطالعات مولکولی، DNA نمونه ها با استفاده از روش CTAB استخراج و قطعه ژنی زیر واحد یک سیتوکروم اکسیداز میتوکندری (COI) تکثیر و توالی یابی شد. نتایج شناسایی های مورفولوژیک، نشان داد تمامی نمونهها به احتمال قوی متعلق به جنس Callista گونه C.umbonellaاز خانواده Veneridae میباشند. در مجموع تعداد 17 توالی به دست آمد. به جز نمونه شماره 9 (NI9)بلاست توالی های نمونههای مطالعه حاضر بیش ترین درصد شباهت را با گونه DQ184850)Turtonia minuta )از خانواده Veneridaeنشان دادند. نمونه شماره 9 (NI9) بیش ترین شباهت را با گونه (Costacallista impar (DQ184808 نشان داد که این گونه نیز از خانواده Veneridae محسوب میشود. ترسیم درختان و هم ترازی این توالیها در بانک ژن فقط توانست تعلق آن ها را به خانواده Veneridae اثبات کند. نتایج توپولوژی درختان تکاملی برای هرسه آنالیز(Maximum parsimony, Maximum likelihood) در هر 17 توالی نشان دادند، توالی نوکلئوتیدی ژن COI، در تمام نمونهها که به عنوان یک گونه معرفی شده اند، یکسان نیست. با توجه به این که از نظر مورفولوژی شباهت زیادی در میان نمونهها مشاهده شد با اینحال اختلافات ژنتیکی در درختان ترسیم شده نشان داد احتمال پدید آمدن گونهای جدید را نیز ممکن است وجود داشته باشد و با بررسیهای بیش تر و مطالعات دقیقتر مورفولوژی و نشانگرهای مولکولی بیش تر نظر قاطعانهتری ارائه داد.
http://www.aejournal.ir/article_63784_e051bc32dcba2353586a9547df3a1c0e.pdf
2018-03-21
337
344
دوکفهای
ژن سیتوکروم اکسیداز (COI)
فیلوژنی
مورفولوژی
نایبند
فریبا
قایدی
fariba.ghaedii@gmail.com
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر
AUTHOR
حسین
ذوالقرنین
zolgharnein@kmsu.ac.ir
2
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر
LEAD_AUTHOR
محمدباقر
نبوی
nabavishiba@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر
AUTHOR
احمد
سواری
savari53@yahoo.com
4
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر
AUTHOR
محمدعلی
سالاری
salari@kmsu.ac.ir
5
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر
AUTHOR
اشجع اردلان، ا.، 1372. شناسایی و بررسی پراکنش دوکفه ای های مناطق جزر و مدی خلیج چابهار و سواحل اطراف آن. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال. 135 صفحه.
1
اشجع اردلان، ا.؛ عمادی، ح. و رابط، ل.، 1387. بررسی فراوانی دوکفه ای Amiantis umbonella در ساحل گلی بندرعباس، خلیج فارس. مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. دوره 1، شماره 3، صفحات 23 تا 33.
2
اشجع اردلان، ا.؛ نجات خواه معنوی، پ. و عزیزی، ن.، 1387. شناسایی دوکفه ای های جزایر خارک و خارکو. مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. دوره 3، شماره 1، صفحات 66 تا 77.
3
تجلی پور، م.، 1373. بررسی تکمیلی سیستماتیک و انتشار نرم تنان سواحل ایرانی خلیج فارس. انتشارات خیبر، چاپ اول، تهران، ایران.
4
حسین زاده صحافی،ه.؛ دقوقی، ب. و رامشی، ح.، 1379. اطلس نرم تنان خلیج فارس. موسسه تحقیقات شیلاتی ایران. تهران، چاپ اول. 248 صفحه.
5
حسین زاده صحافی، ه.، 1383. زیست شناسی تولیدمثل صدف دسته چاقویی (Solenrosemaculatus) در سواحل شمالی خلیج فارس. مجله پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. دوره 62 صفحات 14 تا 20.
6
سعیدی، ه.؛ پاشایی راد، ش.؛ اشجع اردلان، ا.؛ کامرانی، ا. و حسن زاده کیابی، ب.، 1381. مورفومتری و بررسی ارتباط طول وزن، طول- عمق و قطر طولی سوراخ حفر شده توسط دوکفه ای دسته چاقویی (Solen dactylus) در آب های ساحلی بندرعباس، خلیج فارس. مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. دوره 18، شماره 4، صفحات 79 تا 88.
7
کاظمیان، م.؛ دلفیه، پ. و خدادادی، م.، 1388. بررسی فراوانی دوکفه ای ها و شکم پایان در سواحل صخره ای طیس، واقع در خلیج فارس. مجله بیولوژی دریا. دوره 1، شماره 3، صفحات 63 تا 77.
8
کامرانی، ا.؛ بهزادی، س. و هاشمی پور، ف.، 1392. بررسی تنوع و شناسایی دوکفه ای ها و شکم پایان سواحل شهر بندرعباس. مجله اقیانوس شناسی. دوره 4، شماره 13، صفحات 53 تا 60.
9
نبوی، س.م.ب.؛ قطب الدین، ن.؛ کوچنین، پ. و دهقان مدیسه، س.، 1388 . مطالعه جمعیت دوکفه ای های غالب سواحل هندیجان خلیج فارس. مجله بیولوژی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. دوره 1، شماره 2، صفحات 1 تا 13.
10
نیامیمندی، ن.، 1389. شناسایی، پراکنش و برآورد ذخیره صدف های خوراکی در آب های ساحلی استان بوشهر (88-87) گزارش نهایی پروژه، موسسه تحقیقات شیلات ایران. تهران.
11
Barnes, R.S.K.; Calow, P.J.W.; Golding, D.W.; Spicer, S.I., 2001.The invertebrates. BlackWell Science Ltd. USA.
12
Campbell, D.C., 2000. Molecular evidence on the evolution of the Bivalvia. In: Harper EM, Taylor JD, Crame JA, editors. The evolutionary biology of the Bivalvia. Vol. 177, pp: 31-46.
13
Canapa, A.; Marota, I.; Rollo, F. and Olmo, E., 1996. Phylogenetic analysis of Veneridae (Bivalvia): comparison of molecular and palaeontological data. Journal of Molecular Evolution. Vol. 43, pp: 517-522.
14
Canapa, A.: Schiaparelli, S.: Marota, I. and Barucca, M., 2003. Molecular data from the 16S rRNA gene for the phylogeny of Veneridae (Mollusca: Bivalvia). Marine Biology. Vol. 142, pp: 1125-1130.
15
Carpenter, K.E. and Niem, V.H., 1998. FAO speices identification guide for fishery purpose. The living marine resources of the Western Central Pacific. Volume 2. Cephalopods, crustaceans, holothurians and sharks. Rome, FAO.
16
Chen, J.; Li, Q.; Kong, L. and Yu, X., 2013. Additional lines of evidence provide new insights into species diversity of the Paphia subgenus Protapes (Mollusca, Bivalvia, Veneridae) in seas of south China. Marine Biodiversity. Vol. 44, pp: 55-61.
17
Coan, E.V. and Scott, P.H., 1997. Checklist of the marine bivalves of the northeastern Pacific Ocean.Santa Barbara Museum of Natural History. Science. Vol. 1, pp: 1-28.
18
De Leon, J.H.; Jones, W.A.; Samou, M. and Morgan, D.J.W., 2006. Genetic and hybridization evidence confirms that a geographic population of Gonatocerus morrilli (Hymenoptera: Mymaridae) from California is a new species: egg parasitoids of the glassy-winged sharpshooter Homalodisca coagulata (Homoptera: Cicadellidae). Biological Control. Vol. 38, pp: 282-293.
19
Folmer, O.; Black, M.; Hoeh, W.; Lutz, R. and Vrijenhoek, R., 1994. DNA primers for amplification of mitochondrial cytochrome c oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates. Molecular Marine Biology and Biotechnology. Vol. 3, pp:294-299.
20
Frizzell, D.L., 1936. Preliminary reclassiWcation of veneracean pelecypods. Bull. Mus. Roy. Hist. Nat. Belgique. Vol. 12, pp: 1-84.
21
Gosling, E., 2003. Bivalve molluscs biology, ecology and culture. Fishing News Books, a division of Blackwell Publishing. UK.
22
Harte, M.E., 1992. A new approach to the study of bivalve evolution. American malacological Bulletin, Vol, 9, pp:199-206.
23
Hebert, P.D.N.; Cywinska, A.; Ball, S.L. and deWaard, J.R., 2003. Biological identifications through DNA barcodes. Philosophical Transactions of the Royal Society B. Vol. 270, pp: 313-321.
24
Kappner, I. and Bieler, R., 2008. Phylogeny of Venus clams (Bivalvia: Venerinae) as inferred from nuclear and mitochondrial gene sequences. Molecular Phylogenetics and Evolution. Vol. 40, pp: 317-331.
25
Popa, O.P.; Murariu, D. and Popa, L.O., 2007. Comparison of four DNA extraction methods from invasive freshwater bivalve species (Mollusca: Bivalvia) in Romanian fauna. Travaux du Muséum National d’Histoire Naturelle Grigore Antipa. Vol. 6, pp: 527-536.
26
Radulovici, A.; Archambault, P. and Dufresne, F., 2010. DNA Barcodes for marine Biodiversity: Moving Fast Forward. Journal Diversity. Vol. 2, pp: 450-472.
27
Saeedi, H.; Ardalan, A.; Kamrani, E. and Kiabi, H.B., 2010. Reproduction, growth and production of Amiantis umbonella (Bivalvia: Veneridae) on northern coast of the Persian Gulf, Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. Vol. 90, pp: 711-718.
28
Swofford, D., 2002. phylogenetic analysis using parsimony, version 4.0 b10. Sunderland, MA: Sinauer Associates.
29
Tamura, K.; Stecher, G.; Peterson, D.; Filipski, A. and Kumar, S., 2013. MEGA6: Molecular Evolutionary Genetics Analysis Version 6.0.
30
Tan, D.S.H.; Ang, Y.; Lim, G.S.; Ismail, M.R.B. and Meier, R. 2010. From ‘cryptic species’to integrative taxonomy: an iterative process involving DNA sequences, morphology, and behaviour leads to the resurrection of Sepsis pyrrhosoma (Sepsidae: Diptera). Zoologica Scripta. Vol. 39, pp: 51-61.
31
ORIGINAL_ARTICLE
القای آسیب ژنتیکی در ماسل آب شیرین Anodonta cygnea تحت مواجهه با نانو اکسید روی
با توجه به کاربردهای زیستی گسترده نانوذرات روی طی سال های اخیر، نگرانی های جدی در خصوص اثرات این مواد بر سلامت محیط زیست ایجاد گشته است. در پژوهش حاضر، به ارزیابی پتانسیل ژنوتوکسیک نانوذرات اکسید روی در ماسل Anodonta cygneaبه عنوان گونه ای با اهمیت اکولوژیکی بالا پرداخته شد. بدین منظور، ماسل ها به مدت 14 روز در معرض غلظت های 0 (شاهد)، 2/5، 25 و 50 میلی گرم بر لیتر نانو اکسید روی قرار گرفتند. جهت ارزیابی آسیب DNA از طریق الکتروفورز ژل سلول منفرد، از بافت های آبشش و هپاتوپانکراس طی روزهای 7 و 14 مواجهه نمونه برداری به عمل آمد. هم چنین آزمون ریزهسته ها با استفاده از بافت آبشش ماسل ها طی روزهای 7 و 14 انجام و فراوانی ریزهسته ها تعیین گردید. با توجه به نتایج، مواجهه با نانوذرات اکسید روی منجر به القای بروز ریزهسته ها و آسیب DNA در A. cygneaگردید به نحوی که فراوانی ریزهسته ها و مقادیر پارامترهای طول، مومنتوم و درصد DNA دنباله و هم چنین شاخص آسیب ژنتیکی در تمامی تیمارهای مواجهه یافته با نانوذرات اکسید روی در مقایسه با گروه شاهد افزایش یافت. هم چنین با افزایش غلظت و زمان مواجهه با نانوذرات اکسید روی، روند افزایشی در میزان آسیب وارد شده مشاهده شد. در مقایسه بین بافت های مورد بررسی نیز، بافت هپاتوپانکراس حساسیت بالاتری نسبت به سمیت ژنتیکی نانو اکسید روی نشان داد. با توجه به نتایج حاصل از پژوهش حاضر می توان بیان داشت که نانو اکسید روی دارای اثرات ژنوتوکسیک بالقوه بر ماسل A. cygnea می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_63862_2a183f42a97fada07161be6d40f5affb.pdf
2018-03-21
345
352
سیب DNA
ریزهسته
ماسل
نانو اکسید روی
حدیثه
کشیری
hadiskashiri@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 487-49175
LEAD_AUTHOR
سارا
جعفری
ss.jk.sara@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 487-49175
AUTHOR
امیر
قادرمرزی
a.qadermarzi@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 487-49175
AUTHOR
Ahamed, M.; Siddiqui, M.A.; Akhtar, M.J.; Ahmad, I.; Pant, A.B. and Alhadlaq, H.A., 2010. Genotoxic potential of copper oxide nanoparticles in human lung epithelial cells. Biochem. Biophys. Res. Commun. Vol. 396, pp: 578-583.
1
Asghar, M.S.; Qureshi, N.A.; Jabeen, F. and Khan,S., 2016. Genotoxicity and oxidative stress analysis in the Catla catla treated with ZnO NPs. JBES. Vol. 8, pp: 91-101.
2
Baker, T.J.; Tyler, C.R. and Galloway, T.S., 2014. Impacts of metal and metal oxide nanoparticles on marine organisms. Environ. Pollut. Vol. 186, pp: 257-271.
3
Bhatt, I. and Tripathi, B.N., 2011. Interaction of engineered nanoparticles with various components of the environment and possible strategies for their risk assessment. Chemosphere. Vol. 82, pp: 308-317.
4
Bogutska, К.І.; Sklyarov, Y.P. and Prylutskyy, Y.I., 2013. Zinc and zinc nanoparticles: biological role and application in biomedicine. Ukr. Bioorg. Acta. Vol. 1, pp: 9-16.
5
Canesi, L.; Ciacci, C.; Fabbri, R.; Marcomini, A.; Pojana, G. and Gallo, G., 2012. Bivalve molluscs as a unique target group for nanoparticle toxicity. Mar. Environ. Res. Vol. 76, pp: 16-21.
6
Chojnacki, J.C.; Grzeszczyk-Kowalska, A. and Buczek, W., 2009. Biometrics of the swan mussels Anodonta cygnea in the southwest part of the Szczecin Lagoon in 2007. EJPAU. Vol. 12, No. 4, pp: #02.
7
Chojnacki, J.C.; Rosinska, B.; Rudkiewicz, J. and Smoła, M., 2011. Biometrics of the Swan Mussel Anodonta cygnea. Polish J. of Environ. Stud. Vol. 20, No. 1, pp: 225-230.
8
Daughton, C.G., 2004. Non-regulated water contaminants: emerging research. Environ. Impact Assess. Rev. Vol, 24,pp: 711-732.
9
Dhawan, A.; Bajpayee, M. and Parmar, D., 2009. Comet assay: a reliable tool for the assessment of DNA damage in different models. Cell. Biol. Toxicol. Vol. 9, pp: 5-32.
10
Dumont, E.; Johnson, A.C.; Keller, V.D.J. and Williams, R.J., 2015. Nano silver and nano zinc-oxide in surface waters - Exposure estimation for Europe at high spatial and temporal resolution. Environ. Pollut. Vol. 196, pp:341-349.
11
Eskandari, S.; Mozdarani, H.; Mashinchian, A.; Moradi, M. and Shahhosseiny, H., 2012. Cytogenetic damage induced by crude oil in Anodonta cygnea (mollusca, bivalvia) assessed by the comet assay and micronucleus test. IJMSE. Vol. 2, No. 4, pp: 215-224.
12
Fahmy, S. and Sayed, D. E., 2017. Toxicological perturbations of zinc oxide nanoparticles in the Coelatura aegyptiaca mussel. Toxico. Ind.l Heal. Vol. 33, pp: 564-575.
13
Falfushynska, H.; Gnatyshyna, L.; Yurchak, I.; Sokolova, I. and Stoliar, O., 2015. The effects of zinc nanooxide on cellular stress responses of the freshwater mussels Unio tumidus are modulated by elevated temperature and organic pollutants. Aquat. Toxicol. Vol. 162, pp: 82-93.
14
Fenech, M., 2006. Cytokinesis-block micronucleus assay evolves into a cytome assay of chromosomal instability, mitotic dysfunction and cell death. Mutat. Res. Vol. 600,pp: 58-66.
15
Gagne, F.; Turcotte, P.; Auclair, J. and Gagnon, C., 2013. The effects of zinc oxide nanoparticles on the metallome in freshwater mussels. Comp. Biochem. Physiol. Vol. 158, pp: 22-28.
16
Gagne, F.; Auclair, J.; Trepanier, S.; Turcotte, P.; Pilote, M. and Gagnon, C., 2016. The impact of zinc oxide nanoparticles in freshwater mussels exposed to municipal effluents. ISJ. Vol. 13, pp: 281-290.
17
Gagnon, C.; Pilote, M.; Turcotte, P.; Andre, C. and Gagne, F., 2016. Effects of exposure to zinc oxide nanoparticles in freshwater mussels in the presence of municipal effluents. ISJ. Vol. 13, pp: 140-152.
18
Handy, R.; Owen, R. and Valsami-Jones, E. 2008. The ecotoxicology of nanoparticles and nanomaterials: current status, knowledge gaps, challenges, and future needs. Ecotoxicology. Vol. 17, pp: 315-325.
19
Gravato, C. and Santos, M.A., 2003. Genotoxicity biomarkers’ association with B(a)P biotransformation in Dicentrarchus labrax L. Ecotoxicol. Environ. Saf. Vol. 55, pp: 352-358.
20
Jaiswal, M.; LaRusso, N.F.; Burgart, L.J. and Gores, G.J., 2000. Inflammatory cytokines induce DNA damage and inhibit DNA repair in cholangio carcinoma cells by a nitric oxide dependent mechanism. Canc Res. Vol. 60, pp: 184-190.
21
Karlsson, H.L., 2010. The comet assay in nanotoxicology research. Anal. Bioanal. Chem. Vol. 398, pp: 651-666.
22
Konca, K.; Lankoff, A.; Banasik, A.; Lisowska, H.; Kuszewski, T.; Gozdz, S.; Koza, Z. and Wojcik, A.A. 2003. Cross-platform public domain PC image-analysis program for the comet assay. Mut. Res. Vol. 534, pp: 15-20.
23
Kopji, G., 2011. The endangered swan mussel Anodonta cygnea (Linnaeus, 1758) is threatened by the common otter Lutra lutra. Folia Malacol. Vol. 19, No. 3, pp: 191-192.
24
Lanzano, T.; Bertram, M.; de Palo, M.; Wagner, C.; Zyla, K. and Graedel, T.E., 2006. The contemporary European silver cycle. Resour. Conserv. Recy. Vol. 46, pp: 27-43.
25
Li, K.; Zhao, X.; Hammaer, B.K.; Du, S. and Chen, Y., 2013. Nanoparticles Inhibit DNA Replication by Binding to DNA: Modeling and Experimental Validation. ACS Nano. Vol. 7, No. 11, pp: 9664-9674.
26
Li, J., 2016. Comparative behavior of nano ZnO, bulk ZnO and ionic zinc in marine environment and effect upon biological target organisms such as primary producers (marine algae Tetraselmis suecia and Phaeodactylum tricornutum) and filter feeder (Mediterranean mussels Mytilus galloprovincialis) chronically exposed. Ph.D. Thesis, University of Degli Studi Napoli. 119 P.
27
Lydeard, C.; Cowie, R.H.; Ponder, W.F.; Bogan, A.E.; Bouchet, P.; Clark, S.A.; Cummings, K.S.; Frest, T.J.; Gargominy, O.; Herbert, D.G.; Hershler, R.; Perez, K.E.; Roth, B.; Seddom, M.; Strong, E.E. and Thompson, F.G., 2004. The Global decline of nonmarine mollusks. Bioscience. Vol. 54, No. 4, pp: 321-328.
28
Ma, L.; Liu, B.; Huang, P.; Zhang, X. and Liu, J.1., 2016. DNA Adsorption by ZnO Nanoparticles near Its Solubility Limit: Implications for DNA Fluorescence Quenching and DNAzyme Activity Assays. Langmuir. Vol. 32, pp: 5672-5680.
29
Martinez, G.R.; Loureiro, A.P.M.; Marques, S.A.; Miyamoto, S.; Yamaguchi, L.F. and Onuki, J., 2003. Oxidative and alkylating damage in DNA. Mutat. Res. Vol. 544, No. 2. pp: 115-127.
30
Midander, K.; Cronholm, P.; Karlsson, H.L.; Elihn, K.; Moller, L.; Leygraf, C. and Wallinder, I.O., 2009. Surface characteristics, copper release, and toxicity of nano-and micrometer-sized copper and copper (II) oxide particles: a cross-disciplinary study. Small. Vol. 5, No. 3, pp: 389-399.
31
Oberdorster, G.; Oberdorster, E. and Oberdorster, J., 2005. Nanotoxicology: an emerging discipline evolving from studies of ultrafine particles. Environ. Health Perspect. Vol. 113, No. 7, pp: 823-39.
32
Park, S.J.; Park, Y.C.; Lee, S.W.; Jeong, M.S.; Yu, K.N. and Jung, H., 2011. Comparing the toxic mechanism of synthesized zinc oxide nanomaterials by physicochemical characterization and reactive oxygen species properties. Toxicol. Lett. Vol. 207, No. 3, pp: 197-203.
33
Pati, R.; Mehta, R.K.; Mohanty, S.; Padhi, A.; Sengupta, M.; Vaseeharan, B.; Goswami, C. and Sonawane, A., 2014. Topical application of zinc oxide nanoparticles reduces bacterial skin infection in mice and exhibits antibacterial activity by inducing oxidative stress response and cell membrane disintegration in macrophages. Nanomedicine. Vol. 10, pp: 1195-1208.
34
Pati, R.; Das, I.; Mehta, R.K.; Sahu, R. and Sonawane, A., 2016. Zinc-oxide nanoparticles exhibit genotoxic, clastogenic, cytotoxic and actin depolymerization effects by inducing oxidative stress responses in macrophages and adult mice. Toxicol. Sci. Vol. 150, No. 2, pp: 454-472.
35
Pourang, N.; Richardson, C.A. and Mortazavi, M.S., 2009. Heavy metal concentrations in the soft tissues of swan mussel (Anodonta cygnea) and surficial sediments from Anzali wetland, Iran. Environ. Monit. Assess. Vol. 163, No. 1-4, pp: 195-213.
36
Ramadan, H. and Mohamed, H., 2016. Studies on the genotoxicity behavior of silver nanoparticles in the presence of heavy metal cadmium chloride in mice. J. Nanomater. Vol. 2016, pp: 1-12.
37
Rosinska, B.; Chojnacki, J.C.; Lewandowska, A.; Matiejczuk, A. and Samiczak, A., 2008. Biometrics of swan mussels (Anodonta cygnea) from chosen lakes in Pomeranian Region. Limnol. Rev. Vol. 8, No. 1-2, pp: 79-84.
38
Royal Commission on Environmental Pollution. 2008. Novel Materials in the Environment: The case of nanotechnology. London UK: Royal Commission.
39
Sabir, S.; Arshad, M. and Chaudhari, S.K., 2014. Zinc oxide nanoparticles for revolutionizing agriculture: synthesis and applications. Sci. World J. Vol. 2014, pp: 1-8.
40
Saleh, K. and Sarhan, M.A.A., 2007. Clastogenic analysis of chicken forms using micronucleus test in peripheral blood. J. Appl. Sci. res. Vol. 3, No. 12, pp: 1646-1649.
41
Saliani, M.; Jalal, R. and Goharshadi, E.K., 2016. Mechanism of oxidative stress involved in the toxicity of ZnO nanoparticles against eukaryotic cells. Nanomed. J. Vol. 3, No. 1, pp: 1-14.
42
Simberloff, D., 2012. Sustainability of biodiversity under global changes, with particular reference to biological invasions. In: Weinstein MP, Turner RE, editors. Sustainability science: The emerging paradigm and the urban environment. New York: Springer. pp: 139-157.
43
Singh, N.; Nelson, B.C.; Scanlan, L.D.; Coskun, E.; Jaruga, P. and Doak, S.H., 2017. Exposure to Engineered Nanomaterials: Impact on DNA Repair Pathways. Int. J. Mol. Sci. Vol. 18, pp: 1-15.
44
Siu, W.H.L.; Caob, J.; Jack, R.W.; Wu, R.S.S.; Richardson, B.J.; Xu, L. and Lam, P.K.S., 2004. Application of the comet and micronucleus assays to the detection of B[a]P genotoxicity in haemocytes of the green lipped mussel. Aquat. Toxicol. Vol. 66, pp: 381-392.
45
Sousa, R.; Varandas, S.; Cortes, R.; Teixeira, A.; Lopes Lima, M.; Machado J. and Guilhermino, L., 2012. Massive die-offs of freshwater bivalves as resource pulses. Int. J. Limnol. Vol. 48, pp: 105-112.
46
Tice, R.R.; Agurell, E.; Anderson, D.; Burlinson, B.; Hartmann, A.; Kobayashi, H.; Miyamae, Y.; Rojas, E.; Ryu, J.C. and Sasaki, Y.F., 2000. Single cell gel/comet assay: guidelines for in vitro and in vivo genetic toxicologytesting. Envi. Mol. Mutagen. Vol. 35, pp: 206-221.
47
Toyokuni, S., 1998. Oxidative stress and cancer: the role of redox regulation. Biotherapy. Vol. 11, No. 2-3, pp: 147-154.
48
Ullah, S.; Begum, M.; Ahmad, S. and Dhama, K., 2016. Genotoxic effect of Endosulfan at sublethal concentrations in Mori (Cirrhinus mrigala) fish using single cell gel electrophoresis assay. Int. J. Pharm. Vol. 12, pp: 169-176.
49
Ullah, S.; Hasan, Z.; Zorriehzahra, M.J. and Ahmad, S., 2017. Diognosis of endosulfan induced DNA damage in rohu using comet assay. IJFS. Vol. 16, No. 1, pp: 138-149.
50
Vaghun, C.C., 2010. Biodiversity Losses and Ecosystem Function in Freshwaters: Emerging Conclusions and Research Directions. BioScience, Vol. 60, pp: 25-35.
51
VROM (Ministry of Housing Spatial Planning and the Environment). 2008. Risk Assessment - Zinc Oxide Part 1: Environment. Bilthoven, Netherlands.
52
Zhao, X.; Wang, S.; Wu, Y.; You, H. and Lv, L., 2013. Acute ZnO nanoparticles exposure induces developmental toxicity, oxidative stress and DNA damage in embryo-larval zebrafish. Aquat. Toxicol. Vol. 136, pp: 49-59.
53
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات سمیت سلولی، همولیز و ضدانعقادی عصاره خاره چسب Siphonaria carbo
بررسی کنونی به منظور تعیین ویژگی سمیت سلولی عصاره های استخراجی از شکم پای Siphonaria carbo انجام شد. میزان سمیت عصاره های آبی و اتانولی این گونه بهوسیله آزمون سمیت یاخته ای با استفاده از آرتمیا انجام شد. هم چنین اثرات انعقادی و لیزکنندگی روی گلبول های قرمز خون انسان بررسی گردید. نمونه ها از صخره های سواحل بوشهر جمع آوری شد. دو روش عصاره گیری از بافت تر و خشک با استفاده از حلال های آبی و اتانولی مورد استفاده قرار گرفت. نتایج آزمون سمیت یاخته ای نشان دهنده این بود که همه عصاره ها (به جز عصاره آبی خشک) اثر کشندگی داشتند و میزان سمیت با افزایش غلظت عصاره همبستگی داشت. عصاره آبی تر بیش ترین میزان سمیت (5/98= LC50-24hr) را در مقایسه با سایر عصاره ها داشت. نتایج به دست آمده از تست همولیز خونی نشان داد اثر همولیتیک معنی داری در عصاره های استخراجی وجود ندارد. هم چنین آزمون های انعقادی نشان دادند خاصیت ضدانعقادی در عصاره های استخراجی وجود ندارد. به طورکلی در بررسی کنونی خاصیت ضدانعقادی قوی مشاهده نشد، ولی بالا بودن اثر کشندگی سلولی عصاره ها، نشان دهنده احتمال بالای سایر اثرات مانند اثرات ضد توموری و ضد انگلی می باشد. روش های تخلیص عصاره ها به منظور دستیابی به کاربردهای دارویی عصاره پیشنهاد می گردد.
http://www.aejournal.ir/article_65507_8f16855b9ea49927872f2e3d558c8518.pdf
2018-03-21
353
360
سمیت سلولی
همولیز خون
ضدانعقاد
فراورده های طبیعی
احمد
شادی
shadi@pgu.ac.ir
1
گروه زیست فناوری دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
امیر
وزیری زاده
amirvz@gmail.com
2
پژوهشکده خلیج فارس، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ایران
AUTHOR
فاطمه
آفریدون
afridoon@لئشهم.زخئ
3
گروه زیست فناوری دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ایران
AUTHOR
Alencar, D.B.; Melo, A.A.; Silva, G.C.; Lima, R.L.; Pires Cavalcante, K.; Carneiro, R.F. and Viana, F.A., .2015. Antioxidant, hemolytic, antimicrobial, and cytotoxic activities of the tropical Atlantic marine zoanthid Palythoa caribaeorum. Anais Da Academia Brasileira de Ciências. Vol. 87, No. 2, pp: 1113-1123.
1
Ansell, A.D.; Gibson, R.N. and Barnes, M., 1999. The biology of siphonariid limpets (Gastropoda: Pulmonata). Oceanography and Marine Biology. An Annual Review. Vol. 37, pp: 245-314.
2
Bahroudi, S.; Nematollahi, M.A.; Aghasadeghi, M.R.; Nazemi, M. and Behrouz, B., 2015. In vitro cytotoxic and anti-cancer effects of body wall for sea cucumber (Holothuria leucospilota). Iranian Journal of Fisheris. Vol. 23, No. 3, pp: 11-19.
3
Becker, S. and Terlau, H., 2008. Toxins from cone snails: properties, applications and biotechnological production. Applied Microbiology and Biotechnology. Vol. 79, No. 1, pp: 1-9.
4
Beukes, D.R. and Davies Coleman, M.T., 1999. Novel polypropionates from the South African marine mollusc Siphonaria capensis. Tetrahedron. Vol. 55, No. 13, pp: 4051-4056.
5
Bondoc, K.G.V.; Lee, H.; Cruz, L.J.; Lebrilla, C.B. and Juinio-Meñez, M.A., 2013. Chemical fingerprinting and phylogenetic mapping of saponin congeners from three tropical holothurian sea cucumbers. Comparative Biochemistry and Physiology Part B: Biochemistry and Molecular Biology. Vol. 166, No. 3, pp: 182-193.
6
Bosch, D.T.; Dance, S.P.; Moolenbeek, R.G. and Oliver, P.G., 1995. Seashells of eastern Arabia. Motivate publishing.
7
Branch, G.M., 1981. The biology of limpets: physical factors, energy flow, and ecological interactions.
8
Branch, G.M. and Cherry, M.I., 1985. Activity rhythms of the pulmonate limpet Siphonaria capensis Q. & G. as an adaptation to osmotic stress, predation and wave action. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology.
9
Vol. 87, No. 2, pp: 153-168.
10
Bubel, A., 1984. Epidermal cells. In Biology of the Integument Springer. pp: 400-447.
11
Carballeira, N.M.; Cruz, H.; Hill, C.A.; De Voss, J.J. and Garson, M., 2001. Identification and total synthesis of novel fatty acids from the siphonarid limpet Siphonaria denticulata. Journal of Natural Products. Vol. 64, No. 11, pp: 1426-1429.
12
Carballo, J.L.; Hernández-Inda, Z.L.; Pérez, P. and García-Grávalos, M.D., 2002. A comparison between two brine shrimp assays to detect in vitro cytotoxicity in marine natural products. BMC Biotechnology. Vol. 2, No. 1, 17 p.
13
Cutignano, A.; Villani, G. and Fontana, A., 2012. One metabolite, two pathways: convergence of polypropionate biosynthesis in fungi and marine molluscs. Organic Letters. Vol. 14, No. 4, pp: 992-995.
14
Davies-Coleman, M.T., 2006. Secondary metabolites from the marine gastropod molluscs of Antarctica, Southern Africa and South America. In Molluscs Springer. pp:. 133-157.
15
Dresch, R.R.; Haeser, A.S.; Lerner, C.B.; Mothes, B.; Hampe, M.M.V. and Henriques, A.T., 2005. Detecção de atividade lectínica e atividade hemolítica em extratos de esponjas (Porifera) nativas da costa atlântica do Brasil. Revista Brasileira de Farmacognosia. São Paulo, SP. Vol. 15, No. 1, pp: 16-22.
16
Edrada, R.A.; Proksch, P.; Wray, V.; Witte, L. and Van Ofwegen, L., 1998. Four New Bioactive Lobane Diterpenes of the Soft Coral Lobophytum p auciflorum from Mindoro, Philippines. Journal of Natural Products. Vol. 61, No. 3, pp: 358-361.
17
Edrada, R.A.; Wray, V.; Witte, L.; Ofwegen, L. and Proksch, P., 2000. Bioactive terpenes from the soft coral Heteroxenia sp. from Mindoro, Philippines. Zeitschrift Für Naturforschung C. Vol. 55, No. 1-2, pp: 82-86.
18
Ehsanpour, Z.; Archangi, B.; Salimi, M.; Salari, M.A. and Zolgharnein, H., 2015. Cytotoxic Assessment of Extracted Fractions of Sea Cucumber Holothuria parva on Cancer Cell Line (MCF7) and Normal Cells. JOC. Retrieved from http://joc.inio.ac.ir/article-1-720-fa.html
19
Fautin, D.G., 1988. Biomedical importance of marine organisms. California Academy of Sciences.
20
Garson, M., 2006. Marine mollusks from Australia and New Zealand: chemical and ecological studies. In Molluscs. Springer. pp: 159-174.
21
Garson, M.J.; Goodman, J.M. and Paterson, I., 1994. A configurational model for siphonariid polypropionates derived from structural and biosynthetic considerations. Tetrahedron Letters. Vol. 35, No. 37, pp: 6929-6932.
22
Herencia, F.; Ubeda, A.; Ferrándiz, M.L.; Terencio, M.C.; Alcaraz, M.J.; García-Carrascosa, M. and Payá, M., 1998. Anti-inflammatory activity in mice of extracts from Mediterranean marine invertebrates. Life Sciences. Vol. 62, No. 9, pp: 115-120.
23
Ismail, H.; Lemriss, S.; Aoun, Z.B.; Mhadhebi, L.; Dellai, A.; Kacem, Y. and Bouraoui, A., 2008. Antifungal activity of aqueous and methanolic extracts from the Mediterranean sea cucumber, Holothuria polii. Journal de Mycologie Médicale/Journal of Medical Mycology. Vol. 18, No. 1, pp: 23-26.
24
Jamali, S.; Emtiazjoo, M.; Teymoori toolabi, L.; Zeynali, S.; Kaypoor, S.; Sardari, S. and Azarang, B., 2010. Antibacterial effect of the Persian Gulf sea cucumber Holoturia. SP extracts on three strain of Escherichia coli. Pathobiology Research. Vol. 12, No. 2, pp: 37-49.
25
Jerez, J.; Cueto, M. and Díaz-Marrero, A.R., 2006. The chemistry of marine pulmonate gastropods. In Molluscs. Springer. pp: 105-131.
26
Kalinin, V.I.; Anisimov, M.M.; Prokofieva, N.G.; Avilov, S.A.; Afiyatullov, S.S. and Stonik, V.A., 1996. Biological activities and biological role of triterpene glycosides from holothuroids (Echinodermata). Echinoderm Stud. Vol. 5, pp: 139-181.
27
Luchtel, D.L.; Martin, A.W.; Deyrup-Olsen, I. and Boer, H.H., 1997. Gastropoda: pulmonata. Microscopic Anatomy of Invertebrates. Vol. 6, pp: 459-718.
28
Margolis, J., 1957. Initiation of blood coagulation by glass and related surfaces. The Journal of Physiology. Vol. 137, No. 1, pp: 95-109.
29
Mariana, N.S.; Norfarrah, M.A.; Nik, K.; Yusoff, F.M. and Arshad, A., 2009. Evaluating the antibacterial activity and in vivo assay of methanolic extract of Stichopus badionotus. International Journal of Pharmacology. Vol. 5, No. 3, pp: 228-231.
30
McCune, J.M.; Namikawa, R.; Shih, C.C.; Rabin, L. and Kaneshima, H., 1990. Suppression of HIV infection in AZT-treated SCID-hu mice. Science. Vol. 247, No. 4942, pp: 564-566.
31
McQuaid, C.D.; Cretchley, R. and Rayner, J.L., 1999. Chemical defence of the intertidal pulmonate limpet Siphonaria capensis (Quoy & Gaimard) against natural predators. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 237, No. 1, pp: 141-154.
32
Meyer, B.; Ferrigni, N.; Putnam, J.; Jacobsen, L.; Nichols, D. and McLaughlin, J., 1982. Brine Shrimp: A Convenient General Bioassay for Active Plant Constituents. Planta Medica. Vol. 45, No. 5, pp: 31-34.
33
Mohammadizadeh, F.; Ehsanpor, M.; Afkhami, M.; Mokhlesi, A.; Khazaali, A. and Montazeri, S., 2013. Antibacterial, antifungal and cytotoxic effects of a sea cucumber Holothuria leucospilota, from the north coast of the Persian Gulf. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. Vol. 93, No. 5, pp: 1401-1405.
34
Mojica, E.; Deocaris, C.C. and Merca, F.E., 2005. A survey of lectin-like activity in philippine marine invertebrates. Philippine Journal of Science. Vol. 134, No. 2, 135 p.
35
Paterson, I. and Perkins, M.V., 1992. Studies in polypropionate synthesis: stereoselective synthesis of denticulatins A and B. Tetrahedron Letters. Vol. 33, No. 6, pp: 801-804.
36
Paul, M.C.; Zubía, E.; Ortega, M.J. and Salvá, J., 1997. New polypropionates from Siphonaria pectinata. Tetrahedron. Vol. 53, No. 6, pp: 2303-2308.
37
Quick, A.J., 1945. On the quantitative estimation of prothrombin. American Journal of Clinical Pathology.
38
Vol. 15, No. 12, pp: 560-566.
39
Ramasamy, P.; Thampi, D.P.K.; Chelladurai, G.; Gautham, N.; Mohanraj, S. and Mohanraj, J., 2013. Screening of antibacterial drugs from marine gastropod Chicoreus ramosus. Journal of Coastal Life Medicine. Vol. 1, No. 3, pp: 181-185.
40
Ravi, C.; Karthiga, A. and Venkatesan, V., 2012. Isolation and biomedical screening of the tissue extracts of two marine gastropods Hemifusus pugilinus (Born, 1778) and Natica didyma (Roding, 1798). Asian Fisheries Science. Vol. 25, pp: 158-169.
41
Sarhadizadeh, N.; Afkhami, M. and Ehsanpour, M., 2014. Evaluation bioactivity of a sea cucumber, Stichopus hermanni from Persian Gulf. Eur. J. Exp. Biol. Vol. 4, pp: 254-258.
42
Shadi, A.; Oujifard, A. and Moosavi, T., 2015. Antibacterial, Cytotoxic and Hemolytic activity of Holothuria parva sea cucumber from north Persian Gulf.
43
Shakouri, A.; Shoushizadeh, M.R. and Nematpour, F., 2016. Antimicrobial Activity of Sea Cucumber (Stichopus variegatus) Body Wall Extract in Chabahar Bay, Oman Sea. Jundishapur Journal of Natural Pharmaceutical Products, (In Press).
44
Thompson, J.E.; Walker, R.P. and Faulkner, D.J., 1985. Screening and bioassays for biologically-active substances from forty marine sponge species from San Diego, California, USA. Marine Biology. Vol. 88, No. 1, pp: 11-21.
45
Wagele, H.; Ballesteros, M. and Avila, C., 2006. Defensive glandular structures in opisthobranch molluscs from histology to ecology. Oceanography and Marine Biology. Vol. 44, 197 p.
46
Wilke, D.V.; Jimenez, P.C.; Araújo, R.M.; da Silva, W.M.B.; Pessoa, O.D.L.; Silveira, E.R. and Simerska,
47
P., 2010. Pro apoptotic activity of lipidic α-amino acids isolated from Protopalythoa variabilis. Bioorganic and Medicinal Chemistry. Vol. 18, No. 22, pp: 7997-8004.
48
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر محافظت کنندگی پروتئین های نوترکیب VP28 و VP19 یک جدایه ویروس لکه سفید به روش خوراکی در برابر ویروس بیماری لکه سفید در میگوی سفید غربی
ویروس بیماری لکه سفید یکی از آسیب رسان ترین ویروسها در پرورش میگوی جهان و ایران است. پروتئین های سطحی این ویروس در مراحل اولیه برخورد با سلول های میزبان نقش بسیار مهمی دارند و کاندیدی برای ساخت واکسن هایزیر واحد یا نوترکیب محسوب می شوند. این مطالعه به منظور دستیابی به این پروتئین ها جهت انجام ایمن سازی میگو وانامی طراحی گردید. ژنوم ویروس لکه سفید از میگوهای بیمار و دارای علائم بالینی مزارع پرورش میگوی چوئبده آبادان استخراج گردید. پس از تکثیر و خالص سازی، ژن پروتئینهایVP28 وVP19در باکتری TG1 کلون شدند. بیان پروتئین بررسی و پلیت های تجاری توسط باکتری حاوی پروتئین نوترکیب غیرفعالشده پوشانده شد. پست لاروهای مرحله 30 میگوی سفید غربی با پلت های نوترکیب تغذیه شده و در روزهای 9 و 23 پس از تغذیه، با ویروس لکه سفید چالش شدند. نتایج آزمایش مواجهه اول نشان داد که کمترین درصد تلفات در گروه های مختلف مربوط به گروه VP28 برابر 3/84±30% و بالاترین درصد مربوط به گروه TG1 برابر 2/93±72/22% بود. در آزمایش مواجهه دوم کم ترین درصد تلفات مربوط به گروهVP28 5/09±%50و بالاترین درصد مربوط به گروه TG1 2/22±75/55% بود. با توجه به نتایج تحقیق پروتئین نوترکیب VP28 قابلیت ایجاد محافظت را در برابر ویروس لکه سفید دارد درحالی که پروتئین نوترکیب VP19 قابلیت محافظت را نخواهد داشت. هم چنین میزان بازماندگی ارتباط مستقیم با مدت زمان در اختیار داشتن پروتئین نوترکیب دارد.
http://www.aejournal.ir/article_65546_b1dd2a019cc033dec7148dff2d121439.pdf
2018-03-21
361
368
ویروس لکه سفید
پروتئین نوترکیب VP28 و VP19
میگوی وانامی
خوزستان
ایران
حسین
هوشمند
houshmand_h@yahoo.com
1
پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
مینا
آهنگرزاده
m.ahangarzadeh@yahoo.com
2
پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران
AUTHOR
ُسیدرضا
سیدمرتضایی
rmortezaei@yahoo.com
3
مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
مسعودرضا
صیفی آبادشاپوری
masoudrs@yahoo.com
4
گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران، اهواز، ایران
AUTHOR
مریم
داغری
daghari1979@yahoo.com
5
گروه میکروبیولوژی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران، اهواز، ایران
AUTHOR
جمال
سلیمانی
houshmand.hossein@gmail.com
6
پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران
AUTHOR
Alabi, A.O.; Jones, D.A. and Latchford, J.W., 1999. The efficacy of immersion as opposed to oral vaccination of Penaeus indicus larvae against Vibrio harveyi. Aquaculture. Vol. 178, pp: 1-11.
1
Ausubel, F.M.; Brent, R.; Kingstone, R.E.; Moore, D.D.; Seidman, J.G.; Smith, J.A. and Struhl, K., 1992. Short Protocols in Molecular Biology.2nd edition, John Wiley and sons. New York. pp: A1-15.
2
Bright Singh, I.S.; Manjusha, M.; Pai, S.S. and Philip, R., 2005. Fenneropenaeus indicus is protected from white spot disease by oral administration of inactivated white spot syndrome virus. Diseases of Aquatic Organisms. Vol. 66, pp: 265-270.
3
Caipang, C.M.A.; Verjan, N.; Ooi, E.L.; Kondo, H.; Hirono, I.; Aoki, T.; Kiyono, H. and Yuki, Y., 2008. Enhanced survival of shrimp, Penaeus (Marsupenaeus) japonicus from white spot syndrome disease after oral administration of recombinant VP28 expressed in Brevibacillus brevis. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 25, pp: 315-320.
4
Chen, L.L.; Leu, J.H.; Huang, C.J.; Chou, C.M.; Chen, S.M.; Wang, C.H.; Lo, C.F. and Kou, G.H., 2002a. Identification of a nucleocapsid protein (VP35) gene of shrimp white spot syndrome virus and characterization of the motif important for targeting VP35 to the nuclei of transfected insect cells. Virology. Vol. 293, pp: 44-53.
5
Chen, L.L.; Wang, H.C.; Huang, C.J.; Peng, S.E.; Chen, Y.G.; Lin, S.J.; Chen, W.Y.; Dai, C.F.; Yu, H.T. and Wang, C.H., 2002b. Transcriptional analysis of the DNA polymerase gene of shrimp white spot syndrome virus. Virology. Vol. 301, pp: 136-147.
6
Citarasu, T.; Sivaram, V.; Immanuel, G.; Rout, N. and Murugan, V., 2006. Influence of selected Indian immunestimulant herbs against white spot syndrome virus (WSSV) infection in black tiger shrimp, Penaeus monodon with reference to haematological, biochemical and immunological changes. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 21, pp: 372-384.
7
Dehghan, M.; Jafariyan, H.; HabibiRezai, M.; Amoozagar, M.A. and Sahandi, J., 2011. Potential of Brine Shrimp (Artemia urmiana) Enrichment with Two Species of Bacillus and Yeast (Saccharomyces cerevisiae). World J of Fish and Marine Sciences. Vol. 3, No. 6, pp: 523-528.
8
Devaraja, T.N.; Otta, S.K.; Shubha, G.; Karunasagar, I.; Tauro, P. and Karunasagar, I., 1998. Immunostimulation of shrimp through oral administration of Vibrio bacterin and yeast glucan in: Advances in shrimp biotechnology. Flegel, T. W., (Ed), National centre for genetic engineering and Biotechnology, Bangkok. pp: 167-170.
9
Du, H.H.; Xu, Z.R.; Wu, X.F.; Li, W.F. and Dai, W., 2006. Increased resistance to white spot syndrome virus in Procambarus clarkii by injection of envelope protein VP28 expressed using recombinant baculovirus. Aquaculture.
10
Vol. 260, pp: 39-43.
11
Durand, S.; Lightner, D.V.; Nunan, L.M.; Redman, R.M.; Mari, J.and Bonami, J.R., 1996. Application of gene probes as diagnostic tools for white spot baculovirus (WSBV) of penaeid shrimp. Diseases of Aquatic Organisms. Vol. 27, pp: 59-66.
12
Flegel, T.W. and Alday-Sanz, V., 1998. The crisis in Asian shrimp aquaculture: current status and future needs. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 14, pp: 269-273.
13
Houshmand, H., 2014. Protection of white leg shrimp (Litopenaeus vannamei) against white spot disease virus using oral recombinant bio encapsulated VP28 protein, a thesis Submitted in partial fulfillment of the requirement for the degree PhD in Aquatic Animals Health, Shahid Chamran University, Ahvaz, Iran., No: 9358959 (in Persian).
14
Inouye, K.; Miwa, S.; Oseko, N.; Nakano, H.; Kimura, T. and Momoyama, K., 1994. Mass mortalities of cultured kuruma shrimp, Penaeus japonicus, in Japan in 1993: electron microscopic evidence of the causative virus. Fish Pathology. Vol. 29, pp: 149-158.
15
Jha, R.K.; Xu, Z.R. and Pandey, A., 2006. Protection of Procambarus clarkia against white spot syndrome virus using recombinant subunit injection vaccine expressed in Pichapastoris. Fisheries Science. Vol. 72, pp: 1011-1019.
16
Jha, R.K.; Xu, Z.R.; Bai, S.J.; Sun, J.Y.; Li, W.F. and Shen, J., 2007. Protection of Procambarus clarkii against white spot syndrome virus using recombinant oral vaccine expressed in Pichiapastoris. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 224, pp: 295-307.
17
Kou, G.H.; Peng, S.E.; Chiu, Y.L. and Lo, C.F., 1998. Tissue distribution of white spot syndrome virus (WSSV) in shrimp and crabs. In: Advances in Shrimp Biotechnology (ed. by T.W. Flegel), pp: 267-271. National Center for Genetic Engineering and Biotechnology, Bangkok.
18
Lightner, D.V., 1996. A Handbook of Pathology and Diagnostic Procedures for Diseases of Penaeid Shrimp. World Aquaculture Society, Baton Rouge, Louisiana, USA.
19
Lightner, D.V., 2003. Exclusion of specific pathogens for disease prevention in a penaeid shrimp biosecurity program. In: Biosecurity in aquaculture production systems: Exclusion of pathogens and other undesirables (C.S. Lee & P.J. O’Bryen, eds.). The World Aquaculture Society, Baton Rouge, LA, USA. pp: 81-116.
20
Loker, E.S.; Adema, C.M.; Zhang, S.M. and Kepler, T.B., 2004. Invertebrate immune systems not homogeneous, not simple, not well understood. Immunology Review. Vol. 198, pp: :10-24.
21
Mavichak, R.; Kondo, H.; Hirono, I.; Aoki, T.; Kiyono, H. and Yuki, Y., 2009. Protection of pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei against white spot virus following administration of N-terminus truncated recombinant VP28 protein expressed in Gram-positive bacteria, Brevibacillus choshinensis., Aquaculture Science. Vol. 57, pp: 83-90.
22
Musthaq, S.S.; Sudhakaran, R.; Ahmed, V.P.I.; Balasubramanian, G. and SahulHameed, A.S., 2006. Variability in the tandem repetitive DNA sequences of white spot syndrome virus (WSSV) genome and suitability of VP28 gene to detect different isolates of WSSV from India. Aquaculture. Vol. 256, pp: 34-41.
23
OIE (World Organization for Animal Health, formerly Office International des Epizooties). 2003. Manual of diagnostic tests for aquatic animals, 4th ed. OIE, Paris.
24
Rojtinnakorn, J.; Hirono, I.; Itami, T.; Takahashi, Y. and Aoki, T., 2002. Gene expression in haemocytes of kuruma prawn, Penaeus japonicus, in response to infection with WSSV by EST approach. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 13, pp: 69-83.
25
Rout, N.; Kumar, S.; Jaganmohan, S. and Murugan, V., 2007. DNA vaccines encoding viral envelope proteins confer protective immunity against WSSV in black tiger shrimp. Vaccine. Vol. 25, pp: 2778-2786.
26
Roux, M.M.; Pain, A.; Klimpel, K.R. and Dhar, A.K., 2002. The lipopolysaccharide and β-1, 3 glucan binding protein gene is up regulated in white spot virus infected shrimp (Penaeus stylirostris). Journal of Virology. Vol. 76, pp: 7140-7149.
27
Van de Braak, C.B.T.; Botterblom, M.H.A.; Huisman, E.A.; Rombout, J.H.W.M. and Van der Knaap,
28
W.P.W., 2002. Preliminary study on the haemocyte response to white spot syndrome virus infection in black tiger shrimp Penaeus monodon. Diseases of Aquatic Organisms. Vol. 51, pp: 149-155.
29
Vaseeharan, B.; Anand, T.P.; Murugan, T. and Chen, J.C., 2006. Shrimp vaccination trials with the VP292 protein of white spot syndrome virus. Letters of Applied Microbiology. Vol. 43, pp: 137-142.
30
Walker, P.J. and Mohan, C.V., 2009. Viral disease emergence in shrimp aquaculture: origins, impact and the effectiveness of health management strategies. Review in Aquaculture. Vol. 1, pp: 125-154.
31
Wang, C.H.; Lo, C.F.; Leu, J.H.; Chou, C.M.; Yeh, P.Y.; Chou, H.Y.; Tung, M.C.; Chang, C.F.; Su, M.S. and Kou, G.H., 1995. Purification and genomic analysis of baculovirus associated with white spot syndrome (WSBV) of Penaeus monodon. Diseases of Aquatic Organisms. Vol. 23, pp: 239-242.
32
Witteveldt, J., 2006. On the vaccination of shrimp against white spot syndrome virus. Thesis Wageningen University. ISBN: 90-8504-331-X
33
Witteveldt, J.; Cifuentes, C.C.; Vlak, J.M. and Van Hulten, M.C., 2004a. Protection of Penaeusmonodon against white spot syndrome virus by oral vaccination. Journal of Virology. Vol. 78, pp: 2057-2061.
34
Witteveldt, J.; Vlak, J.M. and Van Hulten, M.C., 2004b. Protection of Penaeus monodon against white spot syndrome virus using a WSSV subunit vaccine. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 16, pp: 571-579.
35
Witteveldt, J.; Vlak, J.M. and Van Hulten, M.C., 2006. Increased tolerance of Litopenaeus vannamei to white spot syndrome virus (WSSV) infection after oral application of the viral envelope protein VP28. Diseases of Aquatic Organisms. Vol. 70, pp: 167-170.
36
Wu, W.; Wang, L. and Zhang, X., 2005. Identification of white spot syndrome virus (WSSV) envelope proteins involved in shrimp infection. Virology. Vol. 332, pp: 578-583.
37
Wu, J.L.; Nishioka, T.; Mori, K.; Nishizawa, T. and Muroga, K., 2002. A timecourse study on the resistance of Penaeus japonicus induced by artificial infection with white spot syndrome virus. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 13, pp: 391-403.
38
Xu, Z.R.; Du, H.H.; Xu, Y.X.; Sun, J.Y. and Shen, J., 2006. Crayfish Procambarus clarkii protected against white spot syndrome virus by oral administration of viral proteins expressed in silkworms. Aquaculture. Vol. 253,
39
pp: 179-183.
40
Yi, G.; Wang, Z.; Qi, Y.; Yao, L.; Qian, J. and Hu, L., 2004. VP28 of shrimp white spot syndrome virus is involved in the attachment and penetration into shrimp cells. Journal of Biochemistry and Molecular Biology. Vol. 37, pp: 726-734.
41
Yi, M.; Jiang Feng, L.; Zhang, X.W.; Wang, X.W.; Zhao, X.F. and Wang, J.X., 2012. A vector that expresses VP28 of WSSV can protect red swamp crayfish from white spot disease. Developmental and Comparative Immunology. Vol. 36, pp: 442-449.
42
Zhu, Y.; Ding, Q. and Yang, F., 2007. Characterization of a homologous-region-binding protein from white spot syndrome virus by phage display. Virus Research. Vol. 125, pp: 145-152.
43
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی سیستماتیک روزنه داران کفزی در رسوبات آب های ساحلی جزیره هرمز (خلیج فارس)
هدف از انجام این پژوهش، شناسایی گونه ای روزنه داران و آگاهی از ساختار جوامع این مایوفون های کفزی در محدوده آبهای ساحلی جزیره هرمز (خلیج فارس) است. نمونهبرداری طی یک سال (اسفند 1393تا آیان 1394) و در چهار فصل، از شش ایستگاه در ناحیه زیرکشندی پیرامون جزیره هرمز انجام شد. نمونه های رسوبی با استفاده از Corer با سطح 28/26 سانتی مترمربع و پس از وقوع جزر از عمق یک متری جمع آوری گردید و پس از تثبیت (با محلول فرمالین چهاردرصد)، برای جداسازی با الک 500 میکرون و شناسایی به آزمایشگاه منتقل شدند. در این بررسی از 27 گونه روزنه دار جمع آوری شده، تعداد 12 گونه متعلق به 17 جنس از 14 خانواده و شش راسته بودند. گونه Ammonia beccarii در همه ایستگاه ها به طور مشخص دیده شد. هم چنین بیش ترین تنوع گونه ای مربوط به جنس Quinqueloculina بوده و جنسهای Ammonia، Elphidium، Bolivina، Quinqueloculina و Triloculina عامل ایجاد شباهت با فون روزنهداران سایر سواحل شمالی و جنوبی خلیج فارس بودند. نتایج نشان داد که تنوع گونهها و خانوادههای روزنهدار در مقایسه با سایر مناطق مورد مطالعه در خلیج فارس کم تر بوده است و حضور گونههای شاخص اکوسیستمهای تحت استرس متعلق به دو زیرراسته Rotalina و Miliolina در محدوده مورد بررسی بیانگر احتمال وجود شرایط استرسزا در اکوسیستم باشد که نیازمند پایش عوامل ایجاد کننده استرس میباشد.
http://www.aejournal.ir/article_65681_a8cfaa41567fb258cebbaa7d4da48ff0.pdf
2018-03-21
369
380
روزنه داران
مایوفون ها
جزیره هرمز
خلیج فارس
نرگس
مورکی
nargess_mooraki@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، صندوق پستی:181-19735
LEAD_AUTHOR
بابک
مقدسی
babak_moghaddasi@yahoo.com
2
گروه منابع طبیعی، واحد سوادکوه، دانشگاه آزاد اسلامی سوادکوه، ایران
AUTHOR
رضا
نهاوندی
3
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان اصفهان، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، اصفهان، ایران
AUTHOR
حبیبی، پ.؛ بابازاده، س.ا.؛ علیزاده کتک لاهیجانی، ح. و عباسیان، ه.، 1392. فراوانی روزنه داران کفزی در توالی رسوبی خلیج گرگان، شمال ایران. مجله اقیانوس شناسی. دوره 15، شماره 4، صفحات 59 تا 69.
1
غلام دخت بندری، م. و رضائی، پ.، 1394. مطالعه آلودگی فلزات سنگین رسوبات ساحلی جزیره هرمز و منشأ آنها. مجله اقیانوس شناسی. دوره 22، شماره 6، صفحات 97 تا 106.
2
Alve, E., 1990. Variation in estuarine foraminiferal with diminishing oxygen conditions in Drammensfjord, SE Norway. In: Hemleben, C., Kaminski, M.A., Kuhnt, W., Scott, D.B. (Eds.), Paleoecology, Bioestratigraphy, Paleoceanography and Taxonomy of Agglutinated Foraminifera. Kluwer Academic Publishers. pp: 661-694.
3
Alve, E., 1991. Benthic foraminifer in sediment cores reflecting heavy metal pollution in Sørfjord, western Norway. Journal of Foraminiferal Research.Vol. 21, pp:1-19.
4
Alve, E., 1995. Benthic foraminiferal responses to estuarine pollution. Journal Foraminifera Research. Vol. 25, No. 3, pp: 190-203.
5
Anan, H.S., 1984. Littoral Recent Foraminifera from the Qusseir-Marsa Alam stretch of the Red Sea Coast, Egypt. Revenue De Paleobiologie. Vol. 3, No. 2, pp: 235-242.
6
Bahafzallah, A.B.K., 1979. Recent benthic Foraminifera from Jeddah Bay, Red Sea (Saudi Arabia). Neues Jahrbuch für Geologie und Paläontologie, Mh. pp: 385-395.
7
Basha, S.H., 1983. Foraminifera and Ostracoda from Holocene sediments in the Jordanian part of the Gulf Aqaba. Dirasat Journal. Vol. 10, No. 1, pp: 109-129.
8
Baohua, L.; Ertan, K.T. and Hemleben, C., 2005. Molecular biological research on Foraminifera. Progress in natural Science. Vol. 15, No. 8, pp: 673-677.
9
Be, A.W.H., 1977. An ecological, zoogeographic and taxonomic review of recent planktonic foraminifera. In: Oceanic Micropalentology (ed. Ramsay A.T.S.). London: Academic Press. pp: 1-100.
10
Besonen, M.R., 1997. The Middle and Late Holocene Geology and Landscape evolution of the Lower Archeron River Valleg, Epirus, Greece. M. Sc thesis (Univiversity of Minnesota). 161 p.
11
Bolli, H.M., 1986. Evolutionary trends in Planktonic Foraminifera from early Cretaceous to Recent, with special emphasis on selected tertiary lineages. Société Nationale Elf AquitaineBCREDP. Vol. 10, pp: 55-577.
12
Boukhary, M.; Hewaidy, A.G.; Luterbacher, H.; Bassiouni, M. El-A. and Al-Hitmi, H., 2011. Foraminifera and Ostracodes of early Eocene Ummer Radhuma formation, Dukhan oil field, Qatar. Micropalontology. Vol. 57, No. 1, pp: 37.
13
Cherif, O.H., 1973. On the classification of the genus Quinqueloculina (Foraminifera). Neues Jahrbuch für Geologie und Paläontologie. Vol. 142, pp: 73-96.
14
Cushman, J.A., 1969. Foraminifera their classification and economic use. 1st ed. USA: Harvard University Press. 589 p.
15
Elewi, A. and Safawe, N., 1989. On the distribution of recent foraminifera from southern Iraq. Mar Mesopotamica. Vol. 2, No. 1, pp: 41-56.
16
El-Nakhal, A.H., 1980. Recent foraminifera from the sea shores of Yemen Arab Republic, pl. (1). The genus Quinqueloculina. Journal Science, Riyadh University. Vol. 2, pp: 147-170.
17
EncarnaÇão, S.C., 2006. Holocenic evolution of Guadiana River estuary (South of Portugal) based on benthic foraminiferal assemblages. Anuãrio do Instituto de eociências. Vol. 29, pp: 410-411.
18
Farahani, S., 1998. Geologic, microfaunistic and ecologic studies of the Qeshm Island coastal belt 1st edn. Shahid Beheshti University, Tehran. 337 p.
19
Fichtel, L. and Moll, J., 1798. Testacea microscopica aliaque minuta ex generibus argonauta et nautilusad naturam delineata et descripta. camesinap, Vienna. 124 p.
20
Gooday, A.J., 2002. Biological responses to seasonally varying fluxes of organic matter to the ocean floor: a review. Journal Oceanography. Vol.58, pp: 305-332.
21
Gray, J.S., 1981. The ecology of marine sediments: An introduction to the structure and function of benthic communities. Cambridge studies in modern biology 2. Cambridge University.
22
Haake, F., 1975. Miliolinen (Foram) in oberflachen sedimenten des Persischen Golfes. BMeteoT^ Forsch-Ergeb C. Vol. 21, pp:15-51.
23
Hayward, B.W.; Le Coze, F. and Gross, O., 2017. World Foraminifera Database. Accessed at http://www.marine species.org/foraminifera on 2017-10-01
24
Henson, F., 1950. Middle Eastern tertiary peneroplidae (foraminifera) with remarks on the phylogeny and taxonomy of the family. West Yorkshire Press Co., Wakefield. 70 p.
25
Houbolt, J., 1975. Surface sediments of the Persian Gulf near the Qater Peninsula. State University of Utrecht, Ph. D. Thesis. 113 p.
26
Javaux, E.J. and Scott, D.B., 2003. Illustration of modern benthic foraminifera from bermuda and remarks on distribution in other subtropical/tropical areas. Paleontology Electron. Vol. 6, pp: 1-29.
27
Loeblich, A.R. and Tappan, H., 1964. Sarcodina, chiefly the amoebians and foraminiferida: Treatise on invertebrate paleontology, Par C, Protista, 2, Vol. 1-2, Geol.Soc. Amer and University of Kansas Press, Newyork, USA.
28
Loeblich, A.R. and Tappan, H., 1987. Foraminiferal Genera and Their Classification. Von Nostrand Reinhold Co. New York.
29
Loeblich, A.R. and Tappan, H., 1988. Foraminiferal Genera and Their Classification. Van Nostrand Reinhold, New York. 543 p.
30
Macfarlane, G.R. and Booth, D.J., 2001. Estuarine macrobenthic community structure in the Hawkesbury River Australia: Relationships with sediment physicochemical and anthropogenic parameters. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 72, pp: 51-78.
31
Madkour, H., 2013. Recent benthic foraminifera of shallow marine environment from the Egyptian Red Sea coast. Global Advance Research Journal Geology Marine Research. Vol. 2, pp: 5-14.
32
Moghaddasi, B.; Nabavi, S.M.B.; Vosoughi, G.; Fatemi, S.M.R. and Jamili, S., 2009. Abundance and Distribution of Benthic Foraminifera in the Northern Oman Sea (Iranian Side) Continental Shelf Sediments, Research Journal of Environmental Sciences, Academic Journals Inc. Vol. 3, No. 2, pp: 210-217.
33
Mohamed, M.; Madkour, H. and El-Taher, A., 2013. Recent benthic foraminifera in the saline pool and its surrounding areas at Ras Shukier and Gulf of Suez, Egypt. Indian J Geo-Marine Science. Vol. 42, No. 3, pp: 293 299.
34
MOOPAM (Manual of oceanographic observations and pollutant analyses methods). 1999. Third ed., Section 6, Regional organization for the protection of the marine environment (ROPME), Kuwait.
35
Mooraki, N.; Moghadasi, B.; Manoochehri, H. and Changizy, R., 2012. Spatial distribution and assemblage structure of foraminifera in Nayband Bay and Haleh Estuary, North-West of the Persian Gulf. Iran Journal of Fisheries Science. Vol. 12, No. 3, pp: 654-668
36
Mooraki, N.; Changizy, R.; Moghadasi, B. and Manoochehry, H., 2016a. Genetically identification of foraminiferal assemblage in Haleh Estuary and Nayband Bay Persian Gulf. Journal of Wetland Ecobiology. (Imprinted). pp: 16.
37
Mooraki, N.; Moghadasi, B.; Manoochehry, H. and Changizy, R., 2016b. Determining the concentration of heavy metals and evaluating the contamination degree of Haleh Estuary and Nayband Bay sediments and their effects on foraminifer’s assemblages. Journal of Wetland Ecobiology. (Imprinted). pp :17.
38
Murray, J.W., 1966a. The foraminifera of the Persian Gulf. 4. Khor Al Bazam. Paleogeography, Palaeo climatology, Palaeoecology pp: 17.
39
Murray, J.W., 1966b. The foraminifera of the Persian Gulf. 3. The Halat Al Bahrani Region. Paleogeography, Paleoclimatology, Paleoecology. pp: 10.
40
Murray, J.W., 1970a. The Foraminifera of the Persian Gulf, Living forms in the Abu Dhabi region. Journal of Natural History. Vol. 49, pp: 55-67.
41
Murry, J.W., 1970b. The Foraminifera of the hyper saline Abu Dhabi Lagoon Persian Gulf. Lethaia Journal. Vol. 3,pp: 51-68.
42
Murray, J.W., 1973. Distribution and ecology of living benthic foraminifera’s. Heinemann Educational Books, London. 274 p.
43
Murray, J.W., 1991. Ecology and Paleoecology of Benthic Foraminifera. Longman Scientific and Technical, Essex, England. 570 P.
44
Nabavi, S.M.B. and Zare Maivan, H., 2005. Meiofaunal diversity in the Naiband protected area (Persian Gulf), INOC. Marine and Coastal protected areas, Meknes. Morocco.
45
Nabavi, S.M.B.; Moosapanah, S.G.R.; Rajabzadeh Ghatrami, E.; Ghayyem Ashrafi, M. and Nabavi, S.M.B., 2014. Distribution and Abundance of benthic foraminifera of the Northwestern Persian Gulf. Journal of the Persian (Marine Science). Vol. 5, No. 16, pp: 15-26.
46
Onate, C.P. and Lacuna, M.L.D.G., 2015. Benthic foraminifera in Tantanong Bay Zamboanga sibugay, southern Philippines. AACL Bioflux. Vol. 8, No. 3, pp: 310-322.
47
Pascual, A.; Rodríguez-Lázaro, J.; Martin-Rubio, M.; Jouanneau, J.M. and Weber, O., 2008. A survey of the benthic microfauna (foraminifera, Ostracoda) on the Basque shelf, southern Bay of Biscay. Journal of Marine Systems. Vol. 72, pp: 35-63.
48
Pekey, H., 2006. The distribution and sources of heavy metals in Izmit Bay surface sediments affected by a polluted stream. Marine Pollution Bulletin. Vol. 52, pp: 1197-1208.
49
Phleger, F.B., 1960. Ecology and distribution of recent Foraminifera. The Johns Hopkins Press: Baltimore. 297 p.
50
Rahmati, M., 1997. Sedimentologic, Ecological and Microfaunistic studies of the Eastern Chabahar Gulf. 1st Edn. Shahid Beheshti University, Tehran. 301 p.
51
Risgaard-Petersen, N.; Langezaal, A.M.; Ingvardsen, I.; Schmid, M.C. and Jetten, M.S.M., 2006. Evidence for complete denitrification in a benthic foraminifer. Nature. Vol. 443, pp: 93-96.
52
ROPME. 2013. Integrated report of Meiofauna in the RSA.
53
Saidova, Kh.M., 2010. Benthic Foraminifera communities of the Persian Gulf. Oceanology. Vol. 50, No. 1, pp :61-66.
54
Saito, T., Thompson, P.R., and Breger, D., 1981. Systematic Index of Recent and Pleistocene Planktonic Foraminifera Tokyo: University of Tokyo Press.
55
Sohrabi-Molayousefy, M.; Tehrani, K.K. and Moumeni, I., 2006. Study of benthic foraminifera in mangrove ecosystem of Qeshm Island (Persian Gulf). J Science (Islamic Azad University). Vol. 16, No. 61, pp: 10-19.
56
Sohrabi-Mollayousefi, M. and Sahba, M.; 2010. Environmental response of benthic foraminifera in Asalooye coastline sediments (Persian Gulf). The 1 st International Applied Geological Congress, Department of Geology, Islamic Azad University Mashad Branch, Iran. 26-28 April. pp: 961-965.
57
Soltwedel, T., 2000. Metazoan meiobenthos along continental margins: a review. Progressive Oceanography. Vol. 46, pp: 59-84.
58
Titelboim, D.; Almogi-labin, A.; Herut, B.; Kucera, M.; Schmidt, C.; Hyams-kaphzan, O.; Ovadia, O. and Abramovich, S., 2016. Selective responses of benthic foraminifera to thermal pollution. Marine pollution Bulletin. Vol. 105, No. 1, pp: 324-336.
59
Van der Zwaan, G.J.; Duijnstee, I.A.P.; den Dulk, M.; Ernst, S.R.; Jannink, N.T. and Kouwenhoven, T.J., 1999. Benthic foraminifers: proxies or problems? A review of pale ecological concepts. Earth Science Reviews. Vol. 46, pp: 213-236.
60
World Register of Marine Species. 2017. Available from http://www.marinespecies.org at VLIZ. Doi:10.14284/170
61
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی کیفیت آب رودخانه دهبار با استفاده از شاخصهای زیستی
شاخص های زیستی میتوانند به عنوان یکی از روش های مفید و کارآمد برای ارزیابی کیفیت آب به کار گرفته شوند. در بی شتر مطالعات پایش زیستی، بزرگ بیمهرگان کفزی به دلیل تغییر در تراکم و تنوع خود در اثر فشارهای زیست محیطی و انسانی مورد توجه قرار گرفته اند. در این راستا، هدف از انجام پژوهش حاضر، تعیین درجه آلودگی رودخانه دهبار (خراسان رضوی) با استفاده از شاخص های HFBI، BMWP، ASPT، EPT/CHIR بود.نمونه برداری طی یک فصل از مهرماه تا اواخر آذر 1395 در شش ایستگاه انجام شد. در مجموع 736 عدد ماکروبنتوز متعلق به 7 راسته و 16 خانواده شناسایی شدند که بیش ترین فراوانی مربوط به خانواده Baetidae با 35 درصد بود. نتایج حاصل از شاخص های زیستی نشان داد که ایستگاه های شماره 1، 2 و 3 را در طبقه متوسط تا بد و ایستگاه های 4، 5 و 6 در طبقه متوسط تا خوب طبقه بندی قرار می گیرند. هم چنین نتایج نشان داد که ایستگاه های پایین دست تحت تاثیر فعالیت های انسانی بوده، درحالی که ایستگاه های با کیفیت در بالادست رودخانه قرار داشته و تحت اختلالات کم تر انسانی بودند. به طورکلی تحقیق نشان داد که شاخص های زیستی می تواند ابزار مناسبی برای بررسی و پایش وضعیت کیفیت آب رودخانه دهبار باشند.
http://www.aejournal.ir/article_68393_eee5073cbb93d84f8440b7994b7b43b8.pdf
2018-03-21
381
390
رودخانه دهبار
شاخص زیستی
کیفیت آب
HFBI
BMWP
ASPT
حسن
ملوندی
hmalvandi@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده جغرافیا و علوم محیطی، دانشگاه حکیم سبزواری
LEAD_AUTHOR
ریحانه
مغنی زاده
reyhane70moghanizade@gmail.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده جغرافیا و علوم محیطی، دانشگاه حکیم سبزواری
AUTHOR
اصغر
عبدلی
a_abdoli@sbu.ac.ir
3
گروه تنوع زیستی و مدیریت اکوسیتم ها، پژوشکده علوم محیطی، دانشگاه شهید بهشتی
AUTHOR
احمدی، م. و نفیسی، م.، 1380. شناسایی موجودات شاخص بی مهره آب های جاری. انتشارات خبیر. 234 صفحه.
1
اعظمی، ج.، 1394. امکان استفاده از ماهی ها و بزرگ بیمهرگان در ارزیابی صحیح رودخانه تجن و رابطه آنها با پارامترهای زیستگاه. رساله دکتری، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تربیت مدرس.80 صفحه.
2
پیرعلی زفره ئی، ا. و ابراهیمی درچه، ع.، 1392. ارزیابی کیفی آب رودخانه زاینده رود متاثر از دوره خشک سالی با استفاده از شاخصهای زیستی BMWP، ASPT و هلسینهوف. بهره برداری و پرورش آبزیان. دوره 4، شماره 4، صفحات 71 تا 85.
3
جعفری، ع.؛ کرمی، م.؛ عبدلی، ا.؛ اسماعیلی ساری، ع. و مرتضایی فریزهندی، ق.، 1389. ساختار جمعیتی کفزیان رودخانه کسیلان- مازندران. مجله شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد نوشهر. سال 5، شماره 2، صفحات 101 تا 112.
4
حسینی، ع.؛ استوان، ه. و حسینی، ا.، 1391. برآورد شاخص زیستی کیفیت آب رودخانه خنگ شهرستان سپیدان (استان فارس) با استفاده از فون حشرات آبزی. فصل نامه گیاه پزشکی. دوره 4، صفحات 29 تا 36.
5
حیدری، ن.؛ یزدیان، ح.؛ زهرایی، ب. و جعفرزاده حقیقی فرد، ن.، 1391. ارزیابی زیستی رودخانه کشکان رود براساس تنوع و ساختار جمعیتی ماکروبنتوزها. اولین همایش ملی حفاظت و برنامه ریزی محیط زیست. صفحات 1 تا 11.
6
دادگر، ش.؛ چهرزاد، ف. و رزمی، ک.، 1393. بررسی اثرات کیفی استخرهای پرورش قزل آلای رنگین کمان بر رودخانه شاهرود با استفاده از شاخص ارزیابی سریع زیستی کفزیان Hilsenhoff. محیط زیست جانوری. سال 6، شماره 3، صفحات 143 تا 153.
7
شکری، م.؛ رحمانی، ح. و احمدی، ا.، 1391. ارزیابی گروه های تغذیه ای بزرگ بیمهرگان کفزی به عنوان شاخص کیفی آب رودخانه تجن. مجله پژوهش های جانوری ( مجله زیست شناسی ایران). دوره 28، شماره 1، صفحات 52 تا 61.
8
شکری، م.؛ احمدی، م.؛ رحمانی، ح. و کامرانی، ا.، 1391. بررسی کیفیت رودخانه تجن ساری با استفاده از ترکیب جمعیت بیمهرگان کفزی و شاخص BMWP . محیطزیست جانوری. سال 6، شماره 4، صفحات 221 تا 230.
9
صمدی، م.ط.؛ ساقی، م.ح.؛ رحمانی، ع.ر. و تراب زاده، ح.، 1388. طبقهبندی کیفی آب رودخانه مرادبیگ روستا همدان با استفاده از سیستم اطلاعات جغرافیایی (GIS). ژورنال علمی همدان دانشگاه علوم طبی. سال 6، شماره 3، صفحات 38 تا 43.
10
طباطبایی،ط.؛ امیری، ف. و پذیرا، ع.، 1388. پایش ساختار و تنوع اجتماعات ماکروبنتیک به عنوان شاخصهای آلایندگی در خورهای موسی و غنام. مجله شیلات. شماره 4، صفحات 39 تا 41.
11
فتحی، پ.؛ ابراهیمی، ع.؛ میرغفاری، ن. و اسماعیلی، ع.، 1392. ارزیابی کیفی آب تالاب چغاخور با استفاده از شاخص های BMWP و ASPT. نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 66، شماره 1، صفحات 81 تا 93.
12
مسگران کریمی، ج.؛ آذری تاکامی، ق.؛ خارا، ح. و عباسپور، ر.، 1391. تعیین تنوع و فراوانی بزرگ بیمهرگان کفزی رودخانه دوهزار تنکابن با استفاده از شاخصهای زیستی. مجله آبزیان و شیلات. سال 3، شماره 11، صفحات 27 تا 39.
13
محمودی فرد، ع.؛ ایمانپورنمین، ج.؛ علاف نویریان، ح. و غلامی دشتکی، ک.، 1393. کاربرد شاخص های زیستی- جمعیتی در ارزیابی اکولوژیکی رودخانه شاهرود با استفاده از جمعیت بزرگ بی مهرگان کفزی. محیطزیست جانوری. سال 8، شماره 3، صفحات 1 تا 14.
14
مفتاح هلقی، م.، 1390. پهنه بندی کیفی آب با استفاده از شاخصهای متفاوت کیفی( مطالعه موردی: رودخانه اترک). مجله پژوهش های حفاظت آب و خاک. دوره 18، شماره2، صفحات 211 تا 220.
15
مفتاح هلقی، م. و گلعلی پور، ا.، 1386. طبقهبندی کیفی آب رودخانه اترک. گزارش فنی از اداره محیط زیست استان گلستان. 177 صفحه.
16
Bhadrecha, M.H.; Khatri, N. and Tyagi, S., 2016. Rapid integrated water quality evaluation of Mahisagar River using benthic macroinvertebrates. Journal of Environmental monitoring and ssessment. Vol. 188, pp: 1-8.
17
Esmaeil sari, A.,2002. Pollutant, Hygiene and standard in Environmental. Naghshe Mehr Publisher. 674 p.
18
Feio, M.J.; Ferreira, W.R.; Macedo, D.R.; Eller, A.P.; Alves, C.B.M.; Franca, J.S. and Callisto, M., 2015. Defining and testing targets for the recovery of tropical streams based on macroinvertebrate communities and abiotic conditions. River research and applications. Vol. 31, pp: 70-84.
19
Fries, L.T. and Bowles, D.E., 2002. Water quality and macro invertebrate community structure associated with a sportfish hatchery. Journal of North American journal of aquaculture. Vol. 64, No. 4, pp: 257-266.
20
Fore, L.S.; Karr, J.R. and Wisseman, R.W., 1996. Assessing invertebrate responses to human activity: Evaluating alternative approaches. Vol. 15, No. 2, pp: 212-231.
21
Forio, M.A.E.; lock, K.; Radam, E.D.; Bande, M.; Asio, V. and Goethals, P.L.M., 2017. Assessment and analysis of ecological quality, macroinvertebrate communities and diversity in rivers of a multifunctional tropical island. Ecological indicators. Vol. 77, pp: 228-238.
22
Hawkes, H.A., 1998. Origin and development of the biological monitoring working party score system. Water Research. Vol. 32, pp: 964-968.
23
Tachet, H.; Richoux, P.; Bournaud, M. and Usseglio polatera, P., 2010. invertébrés d'eau douce systématique biologie écologie. 588 p.
24
Hilsenhoff, W.L., 1988. Rapid field assessment of organic pollution with a family level biotic index. Journal of the north american benthological society. Vol. 7, pp: 65-68.
25
Hilsenhoff, W.L., 1977. Use of arthropods to evaluate water quality of streams. Journal of Technical Bulletin Wisconsin Dept. Vol. 100, pp: 1-15.
26
Lental, D., 1993. A biotic index for southeastern united Sataes: derivation and list of tolerance values, with criteria for assessing water quality ratings. Journal of the north american benthological society. Vol. 12, pp: 279-290.
27
Lenat, D., 1998. Water quality assessment of streams using qualitative collection method for benthic macroinvertebrates. Journal of the north american benthological society. Vol. 7, pp: 222-223.
28
Mandaville, S.M., 2002. Benthic macroinvertebrates in freshwater: taxa tolerance values, metrics, and protocols. Division of water New York state. Department of environmental conservation. 128 p.
29
Mccafferty, P. and Provonsha, A., 1983. Aquatic entomology: the fishermen's and ecologist's illustrated guide to insects and their relatives. Jones & bartlett publishers. 450 p.
30
Nemati, M.; Ebrahimi, E.; Mirghaffary, N. and Safyanian, A., 2010. Biological assessment of the Zayandeh Rud River, Iran, using benthic macro invertebrates. Journal of limnologica-ecology and management of inland waters. Vol. 40, pp: 226-232.
31
Overton, J., 2001. Standard Procedures for benthic macroinvertebrates biological assessment. North carolina department of environment and natural resources. 50 p.
32
Pescador, M.L.; Rasmussen, A.K. and Harris, S.C., 1995. Identification manual for the caddisfly (Trichoptera) larvae of Florida. Department of environmental protection, Tallahassee. Florida. 187 p.
33
Perkin, J.L., 1983. Bioassay evaluation of diversity and community comparison indexes. Journal of the water pollution control federation. Vol. 55, pp: 522-530.
34
Rezende, R.S.; Santos, A.M.; Henke Oliveira, C. and Goncalves, J.F., 2014. Effects of spatial and environmental factors on benthic a macroinvertebrate community. Zoologia. Vol. 31, pp: 426-434.
35
Rosenberg, D.M. and Resh, V.H., 1993. Freshwater biomonitoring and benthic macroinvertebrates Dordrecht: Kluwer academic publishers. 46 p.
36
Rosenberg, D.M. and Roch, V.H., 1993. Introduction to Freshwater biomonitoring and benthic macroinvertebrates chapman and hall, New York. pp: 1-9.
37
Sandin, L., 2003. Benthic macroinvertebrates in Swedish stream: community structure, taxon richness, and environmental relations. Journal of ecography. Vol. 26, pp: 269-282.
38
Semenchenko, V.P. and Moroz, M.D., 2005. Comparativeanalysis of biotic indices in the monitoring system of running water in a biospheric reserve. Journal of water resources. Vol. 32, pp: 200-203.
39
Selvanayagam, M. and Abril, R., 2015. Water quality assessment of Pistua River using macroinvertebrates in puyo, pastaza, Ecuador. American journal of life sciernces. Vol. 3, pp: 167-184.
40
Shimba, M.J. and Jonah, F.E., 2016. Macroinvertebrates as bioindicators of water quality in the mkondoa river, Tanzania, in an agricultural area. African journal of aquatic science. Vol. 4, pp: 453-461.
41
Wally, W.J. and Hawkes, H.A., 1996. A computer- based reappraisal of the biological monitoring working party scores using data from the 1990 river quality survey of England and wales. Journal of water research. Vol. 30, pp: 2086-2094.
42
Wlosarska, M. and Weslawski, J.M., 2001. Impact of climate warming on arctic benthic biodiversity: a case study of two artic glacial bays. Journal of climate research. Vol. 18, pp: 127-132.
43
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی شیوع کریپتوسپوریدوزیس انسانی در منطقه ورامین با استفاده ازواکنش زنجیره ای پلیمراز درسال های 92-1391
کریپتوسپوریدیوزیس یکی از شایع ترین عوامل ایجاد کننده اسهال در انسان و بسیاری از پستانداران می باشد که در اثر آن سلول های پوششی روده توسط تک یاخته کریپتوسپوریدیوم آلوده می شوند. این مطالعه به منظور ارزیابی شیوع اپیدمیولوژیکی کریپتوسپوریدیوزیس انسانی درمنطقه ورامین انجام شد. مطالعه به صورت مقطعی درسالهای 92-1391 انجام شد که افراد تحت مطالعه 930نفر شامل530 مرد و 400 زن مبتلا به اسهال مراجعه کننده به بیمارستان مفتح ورامین در محدوده سنی 60-1 سال (با میانگین سنی 2±27) بودند. نمونه مدفوع انسانی جمعآوری و همراه با محلول دیکرومات پتاسیم 2/5 درصد دردمای 4 درجه سانتیگراد نگه داری شدند. اووسیست های کریپتوسپوریدیوم به روش تغلیظی فرمالین دترجنت و رنگ آمیزی به شیوه اسید فست اصلاح شده زیرمیکروسکوپ نوری مورد شناسایی قرار گرفت. هم چنین استخراج DNA از نمونه ها انجام و با پرایمرهای اختصاصی وروش PCR تایید شدند. میزان آلودگی در گروه های سنی 10-1 سال 12مورد (5/17 درصد)، 20-11 سال 7 مورد (3/74 درصد)، 30-21 سال 8 مورد (4/14 درصد)، 40-31 سال 4 مورد (3/41 درصد)، 50-41 سال 3 مورد (2/43 درصد) و 60-51 سال 1 مورد (1/28 درصد) بود که ارتباط معنی داری ازلحاظ آماری بین عفونت کریپتوسپوریدیال با سن ابتلا مشاهده شد (0/05>P). باندهای DNA در محدوده 555 جفت بازی بود. ارتباط مستقیم یا غیرمستقیم انسان با دام می تواند نقش مهمی در انتقال کریپتوسپوریدیوزیس به انسان ایفا کند، لذا رعایت مسایل ایمنی و بهداشتی ضروری می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_68404_0da0d9867e5baf80a011b433cfb7cf2a.pdf
2018-03-21
391
396
کریپتوسپوریدیوزیس
اسهال انسانی
نقص سیستم ایمنی
موسی الرضا
محمدی
r.mohammadi888@yahoo.com
1
گروه پرستاری، دانشکده پرستاری ومامایی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
LEAD_AUTHOR
علی
کاظمی
akph615@gmail.com
2
گروه پرستاری، دانشکده پرستاری ومامایی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
AUTHOR
اعظمی، م. و درستکارمقدم، د.، 1387. بررسی شیوع عفونت کریپتوسپوریدیوم در کودکان زیر 5 سال، بیماران مبتلا به ضعف سیستم ایمنی و افراد در معرض خطر در استان اصفهان. مجله طب جنوب. سال 11، شماره 1، صفحات 47 تا 54.
1
ابراهیم زاده، ا.؛شایان، پ.؛نبیان، ص.؛رهبری، ص. و مخبر دزفولی، م.، 1388. شناسایی کریپتوسپوریدیوم پارووم با روش PCR و تعیین الگوی پروتئینی و آنتی ژن های ایمونوژنیک آن. مجله تحقیقات دامپزشکی دانشگاه تهران. دوره 64، شماره 1، صفحات 15 تا 21.
2
نهروانیان، ح.؛ آذرینوش، آ.؛ اسفندیار، ب.؛ امیرخانی، ع.؛ضیاءپور، ض. و شادیفر، م.، 1390. کریپتوسپوریدیوزیس در مبتلایان به گاستروآنتریت در شهرستان های غرب استان مازندران (87-1386). مجله دانشگاه علوم پزشکی قزوین. دوره 15، شماره 1، صفحات 86 تا 78.
3
دبیرزاده، م.؛ بقایی، م.؛ بکائیان، م. وگودرزی، م.ر.، 1382. شیوع کریپتوسپوریدیوم در کودکان زیر پنج سال مبتلا به اسهال مراجعه کننده به بیمارستان تخصصی اطفال حضرت علی اصغر (ع) شهر زاهدان در طی سال های 77-1376. مجله دانشگاه علوم پزشکی گرگان. سال 5، شماره 11، صفحات 54 تا 59.
4
Abdel Messih, I.A.; Wierzba, T.F.; Abu Elyazeed, R.; Ibrahim, A.F.; Ahmed, S.F. and Kamal, K., 2005. Diarrhea associated with Cryptosporidium parvum among young children of the Nile River Delta in Egypt. J. Trop. Pediatr. Vol. 51, pp: 154-159.
5
Alshamiri, B. and Alzubari, M., 2010. The prevalence of Cryptosporidium spp in children Tiaz district Yemen. Iran. Parasitol. Vol. 5, pp: 26-32.
6
Balouty Dehkordy, A.; Rafiei, A.; Alavi, S. and Latifi, S., 2010. Prevalence of Cryptosporidium infection in immunocompromised patients, in south west of Iran, 2009-10. Iran. J. Parasitol. Vol. 5, pp: 42-47.
7
Collinet Adler, S. and Ward, H., 2010. Cryptosporidiosis: environmental, therapeutic, and preventive challenges. Eur. J. Clin. Microbiol. Infect. Dis. Vol. 29, pp: 927-935.
8
Fallah, M. and Haghighi, A., 1996. Cryptosporidiosis in children with diarrhea admitted to health centers in the west of Iran (Hamadan). Med. J. Islam. Repub. Iran. Vol. 9, pp: 315-317.
9
Hamedi, Y.; Safa, O. and Haidari, M., 2005. Cryptosporidium infection in diarrheic children in southeastern Iran. Pediatr. Infect. Dis. J. Vol. 24, pp: 86-88.
10
Houpt, E.; Bushen, O.Y.; Sam, N.E.; Kohli, A.; Asgharpour, A. and Ng, C.T., 2005. Short report: asymptomatic Cryptosporidium hominis infection among human immunodeficiency virus-infected patients in Tanzania. Am. J. Trop. Med. Hyg. Vol. 73, pp: 520-522.
11
Huang, D.B. and White, A.C., 2006. An updated review on Cryptosporidium and Giardia. Gastroenterol. Clin. North. Am. Vol. 35, pp: 291-314.
12
Hwan, P.; Jin, K. and Sang, G., 2006. A survey of Cryptosporidiosis among 2541 residents of 25 coastal Island in Jeollanam Republic of Korea. Korean. J. Parasitol. Vol. 44, No. 4, pp: 367-372.
13
Jonathans, Y., 2010. Cryptosporidium surveillance and risk factors in the United States. Experi. Parasitol. Vol. 124, No. 1, pp: 31-39.
14
Kia, E.; Hosseini, M.; Nilforoushan, M.; Meamar, A. and Rezaeian, M., 2008. Study of intestinal protozoan parasites in rural inhabitants of Mazandaran province, Northern Iran. Iran. J. Parasitol. Vol. 3, pp: 21-25.
15
Ribes, J.A.; Seabolt, J.P. and Overman, S.B., 2004. Point prevalence of Cryptosporidium, cyclospora and isospora infection in patient being evaluated for diarrhea. AM. J. Clin. Pathol. Vol. 122, pp: 28-32.
16
Sazmand, A.; Rasooli, A.; Nouri, M.; Hamidinejat, H. and Hekmati moghaddam, S., 2012. Prevalence of Cryptosporidium spp. in camels and involved people in Yazd Province, Iran. Iran. J. Parasitol. Vol. 1, pp: 80-84.
17
Xiao, L. and Feng, Y., 2008. Zoonotic cryptosporidiosis. FEMS. Immunol. Med. Microbiol. Vol. 52, No. 3, pp: 309-323.
18