ORIGINAL_ARTICLE
کاربرد نمونهبرداری غیرتهاجمی سرگین برای شناسایی ژنتیکی گوشتخواران (پژوهش موردی: شمالغرب ایران)
پایش جمعیت گونههای کمیاب یا پنهان کار مانند گوشتخواران، به نمونهبرداری از افراد جمعیت نیاز دارد که فرآیندی دشوار، هزینهبر و با نگرانی از اثر منفی بر جانور است. یکی از روشهای پرکاربرد و غیرآسیبرسان گردآوری اطلاعات، تحلیل ژنتیکی نمایههای زیستی بهجامانده از جانوران در زیستگاه طبیعی آنان است. برای ارزیابی کارایی این روش غیرتهاجمی در شناسایی گوشتخواران ایران، 6 منطقه حفاظتشده در شمال غرب ایران برای نمونهبرداری سرگین با هدف استخراج DNA پیمایش شدند. همچنین، درستی شناسایی میدانی سرگین هر گونه براساس ویژگیهای ظاهری مورد ارزیابی قرار گرفت. از مجموع 174 سرگین گردآوریشده با پیمایش فرصتطلبانه حدود 290 کیلومتر، 67/2 درصد نمونهها (117 نمونه) با موفقیت برای توالی مورد نظر سیتوکروم b، تکثیر و تا سطح گونه شناسایی شدند. سرگینهای شناساییشده بهروش ژنتیکی مربوط به 6 گونه گوشتخوار شامل خرس قهوهای (Ursus arctos)، گربه وحشی (Felis silvestris/lybica)، گرگ (Canis lupus)، روباه معمولی (Vulpes vulpes)، سمور سنگی (Martes foina) و شنگ (Lutra lutra) بودند. بدون درنظرگرفتن اثر تعداد نمونه، کمترین نرخ شناسایی درست سرگین در طبیعت (نرخ مثبت صحیح) مربوط به گربه وحشی و شنگ و بیش ترین مربوط به خرس قهوهای بود. بیش ترین نرخ اشتباه در شناسایی سرگین در طبیعت (نرخ مثبت کاذب) به سمور سنگی تعلق داشت. در مقابل، بیش ترین نرخ رد اشتباه یک سرگین (نرخ منفی کاذب) مربوط به گربه وحشی و روباه معمولی بود. این پژوهش، پایهای را برای پژوهشهای بیش تر با هدف گردآوری اطلاعات علمی مورد نیاز برنامههای حفاظت از حیات وحش ایران به کمک ابزارهای مولکولی فراهم میسازد.
http://www.aejournal.ir/article_68500_4d0c8a2ca8fd6fd14492a4282c66623b.pdf
2018-06-22
1
12
نمونهبرداری غیرتهاجمی
نمایه زیستی
DNA سرگین
تکثیر موفق
شناسایی گونه
گوشتخواران
احسان
محمدی مقانکی
ehsan.moqanaki@gmail.com
1
انجمن یوزپلنگ ایرانی، تهران، ایران، صندوق پستی: 8549-14155
LEAD_AUTHOR
اشرفزاده، م.ر.، 1394. تبار گیتاشناسی خرس قهوهای (Ursus arctos Linnaeus, 1758) در ایران. رساله دکتری. گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی. دانشگاه تهران، تهران، ایران.
1
حسینیزوارئی، ف.؛ محمدیمقانکی، ا.؛ فرهادینیا، م.ص.؛ سهرابینیا، ص.؛ جعفرزاده، ف. و شعربافی، ا.، 1394. طعمه خواری گرگ (Canis lupus) از دام اهلی و اثر آن بر نگرش و اقتصاد مردم محلی در پناهگاه حیات وحش انگوران، استان زنجان. فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری. دوره 7، شماره 4، صفحات 21 تا 30.
2
درویشصفت، ع.ا.، 1385. اطلس مناطق حفاظتشده ایران. چاپ نخست. دانشگاه تهران، ایران. 157 صفحه.
3
رضاییخوزانی، ع.؛ کابلی، م.؛ اشرفی، س. و اکبری، ح.، 1394. بررسی همپوشانی رژیم غذایی یوزپلنگ آسیایی و پلنگ ایرانی در منطقه حفاظتشده کوه بافق. دومین همایش یافتههای نوین در محیط زیست و اکوسیستمهای کشاورزی. پژوهشکده انرژیهای نو و محیط زیست دانشگاه تهران، تهران، ایران.
4
زارعی، ع.ا. و پیروی لطیف، ش.،1396. پهنای آشیان بومشناختی و رژیم غذایی شغال طلایی (Canis aureus) در ناحیه کوهچنار شهرستان ارسنجان - استان فارس. فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 1، صفحات 57 تا 64.
5
زمانی، ز.؛ رضایی، ح.؛ عقیلی، س.م.؛ اسدیآقبلاغی، م.؛ شعبانی، ع. و زمانی، ن.،1393. شناسایی گوشت خواران بزرگجثه براساس پلیمورفیسم طول ناحیه کنترل DNA میتوکندری در ایران. پژوهشهای محیط زیست. سال 5، شماره 10، صفحات 211 تا 217.
6
نصیریمقدم، ن.؛ علیآبادیان، م.؛ کابلی، م.؛ کرمی، م.؛ فرحمند، ح.؛ منتظمی، ش. و پرتولدی، چ.، 1393. ساختار ژنتیکی گور ایرانی (Equus hemionus onager) در ذخیرهگاه زیستکره توران و منطقه حفاظتشده بهرام گور. تاکسونومی و بیوسیستماتیک. سال 6، شماره 18، صفحات 19 تا 28.
7
Anwar, M.B.; Jackson, R.; Nadeem, M.S.; Janečka, J.E.; Hussain, S.; Beg, M.A.; Muhammad, G. and Qayyum, M., 2011. Food habits of the snow leopard Panthera uncia (Schreber, 1775) in Baltistan, Northern Pakistan. Eur. J. Wildl. Res. Vol. 57, No. 5, pp: 1077-1083.
8
Beja‐Pereira, A.; Oliveira, R.; Alves, P.C.; Schwartz, M.K. and Luikart, G., 2009. Advancing ecological understandings through technological transformations in noninvasive genetics. Mol. Ecol. Resour. Vol. 9, No. 5, pp: 1279-1301.
9
Chame, M., 2003. Terrestrial mammal feces: a morphometric summary and description. Mem. Inst. Oswaldo Cruz. No. 98, pp: 71-94.
10
Chaves, P.B.; Graeff, V.G.; Lion, M.B.; Oliveira, L.R. and Eizirik, E., 2012. DNA barcoding meets molecular scatology: short mtDNA sequences for standardized species assignment of carnivore noninvasive samples. Mol. Ecol. Resour. Vol. 12, No. 1, pp: 18-35.
11
Davison, A.; Birks, J.D.; Brookes, R.C.; Braithwaite, T.C. and Messenger, J.E., 2002. On the origin of faeces: morphological versus molecular methods for surveying rare carnivores from their scats. J. Zool. (London). Vol. 257, No. 2, pp: 141-143.
12
Elbroch, M.; Mwampamba, T.H.; Santos, M.J.; Zylberberg, M.; Liebenberg, L.; Minye, J.; Mosser, C. and Reddy, E., 2011. The value, limitations, and challenges of employing local experts in conservation research. Conserv. Biol. Vol. 25, No. 6, pp: 1195-1202.
13
Fahimi, H.; Yusefi, G.H.; Madjdzadeh, S.M.; Damangir, A.A.; Sehhatisabet, M.E. and Khalatbari, L., 2011. Camera traps reveal use of caves by Asiatic black bears (Ursus thibetanus gedrosianus) (Mammalia: Ursidae) in southeastern Iran. Journal of Nat. Hist. Vol. 45, No. 37-38, pp: 2363-2373.
14
Farhadinia, M.S.; Akbari, H.; Mousavi, S.J.; Eslami, M.; Azizi, M.; Shokouhi, J.; Gholikhani, N. and Hosseini Zavarei, F., 2013. Exceptionally long movements of the Asiatic cheetah Acinonyx jubatus venaticus across multiple arid reserves in central Iran. Oryx. Vol. 47, No. 3, pp: 427-430.
15
Farrell, L.E.; Roman, J. and Sunquist, M.E., 2000. Dietary separation of sympatric carnivores identified by molecular analysis of scats. Mol. Ecol. Vol. 9, No. 10, pp: 1583-1590.
16
Fernandes, C.A.; Ginja, C.; Pereira, I.; Tenreiro, R.; Bruford, M.W. and Santos Reis, M., 2008. Species specific mitochondrial DNA markers for identification of non invasive samples from sympatric carnivores in the Iberian Peninsula. Conserv. Genet. Vol. 9, No. 3, pp: 681-690.
17
Ghoddousi, A.; Hamidi, A.K.; Ghadirian, T.; Ashayeri, D. and Khorozyan, I., 2010. The status of the endangered Persian leopard Panthera pardus saxicolor in Bamu National Park, Iran. Oryx. Vol. 44, No. 4, pp: 551-557.
18
Ghoddousi, A.; Soofi, M.; Hamidi, A.K.; Lumetsberger, T.; Egli, L.; Khorozyan, I.; Kiabi, B.H. and Waltert, M., 2016. Assessing the role of livestock in big cat prey choice using spatiotemporal availability patterns. PloS ONE. Vol. 11, No. 4, pp: 1-16. e0153439.
19
Hall, T.A., 1999. BioEdit: a user-friendly biological sequence alignment editor and analysis program for Windows 95/98/ NT. Nucl Acids Symp Ser. Vol. 41, pp: 95-98.
20
Harrington, L.A.; Harrington, A.L.; Hughes, J.; Stirling, D. and Macdonald, D.W., 2010. The accuracy of scat identification in distribution surveys: American mink, Neovison vison, in the northern highlands of Scotland. Eur. J. Wildl. Res. Vol. 56, No. 3, pp: 377-384.
21
Hebert, L.; Darden, S.K.; Pedersen, B.V. and Dabelsteen, T., 2011. Increased DNA amplification success of non invasive genetic samples by successful removal of inhibitors from faecal samples collected in the field. Conserv. Genet. Resour. Vol. 3, No. 1, pp: 41-43.
22
Kellner, K.F. and Swihart, R.K., 2014. Accounting for imperfect detection in ecology: a quantitative review. PLoS ONE. Vol. 9, No. 10, pp: 1-8. e111436.
23
Kelly, M.J.; Betsch, J.; Wultsch, C.; Mesa, B. and Mills, L.S., 2012. Noninvasive sampling for carnivores. In Carnivore ecology and conservation: a handbook of techniques. Edited by L Boitani and RA Powell. Oxford University Press, New York, USA. pp: 47-69.
24
Khosravi, R.; Hemami, M.R.; Malekian, M.; Silva, T.L.; Rezaei, H.R. and Brito, J.C., 2017. Effect of landscape features on genetic structure of the goitered gazelle (Gazella subgutturosa) in Central Iran. Conserv. Genet. pp: 1-4.
25
Lonsinger, R.C.; Gese, E.M.; Dempsey, S.J.; Kluever, B.M.; Johnson, T.R. and Waits, L.P., 2015. Balancing sample accumulation and DNA degradation rates to optimize noninvasive genetic sampling of sympatric carnivores. Mol. Ecol. Resour. Vol. 15, No. 4, pp: 831-842.
26
Martínez Gutiérrez, P.G.; Palomares, F. and Fernández, N., 2015. Predator identification methods in diet studies: uncertain assignment produces biased results? Ecography. Vol. 38, No. 9, pp: 922-929.
27
Michalski, F.; Valdez, F.P.; Norris, D.; Zieminski, C.; Kashivakura, C.K.; Trinca, C.S.; Smith, H.B.; Vynne, C.; Wasser, S.K.; Metzger, J.P. and Eizirik, E., 2011. Successful carnivore identification with faecal DNA across a fragmented Amazonian landscape. Mol. Ecol. Resour. Vol. 11, No. 5, pp: 862-871.
28
Monterroso, P.; Castro, D.; Silva, T.L.; Ferreras, P.; Godinho, R. and Alves, P.C., 2013. Factors affecting the (in) accuracy of mammalian mesocarnivore scat identification in South‐western Europe. J. Zool. (London). Vol. 289, No. 4, pp: 243-250.
29
Moqanaki, E.M.; Breitenmoser, U.; Kiabi, B.H.; Masoud, M. and Bensch, S., 2013. Persian leopards in the Iranian Caucasus: a sinking ‘source’ population? Cat News. No. 59, pp: 22-25.
30
Morin, D.J.; Higdon, S.D.; Holub, J.L.; Montague, D.M.; Fies, M.L.; Waits, L.P. and Kelly, M.J., 2016. Bias in carnivore diet analysis resulting from misclassification of predator scats based on field identification. Wildl. Soc. Bull. Vol. 40, No. 4, pp: 669-677.
31
Naderi, S.; Rezaei, H.R.; Pompanon, F.; Blum, M.G.; Negrini, R.; Naghash, H.R.; Balkız, Ö.; Mashkour, M.; Gaggiotti, O.E.; Ajmone Marsan, P. and Kence, A., 2007. The goat domestication process inferred from large-scale mitochondrial DNA analysis of wild and domestic individuals. PNAS. Vol. 105, No. 46. pp: 17659-17664.
32
Nowak, C.; Büntjen, M.; Steyer, K. and Frosch, C., 2014. Testing mitochondrial markers for noninvasive genetic species identification in European mammals. Conserv. Genet. Resour. Vol. 6, No. 1, pp: 41-44.
33
Prugh, L.R. and Ritland, C.E., 2005. Molecular testing of observer identification of carnivore feces in the field. Wildl. Soc. Bull. Vol. 33, No. 1, pp: 189-194.
34
Reed, J.E.; Baker, R.J.; Ballard, W.B. and Kelly, B.T., 2004. Differentiating Mexican gray wolf and coyote scats using DNA analysis. Wildl. Soc. Bull. Vol. 32, No. 3, pp: 685-692.
35
Ripple, W.J.; Estes, J.A.; Beschta, R.L.; Wilmers, C.C.; Ritchie, E.G.; Hebblewhite, M.; Berger, J.; Elmhagen, B.; Letnic, M.; Nelson, M.P. and Schmitz, O.J., 2014. Status and ecological effects of the world’s largest carnivores. Science. Vol. 343, No. 6167, 1241484.
36
ORIGINAL_ARTICLE
مدل سازی مطلوبیت زیستگاه کل و بز (Capra aegagrus) به کمک روش تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی در پارک ملی گلستان
امروزه جدایی زیستگاه اثرات بسیار مهم بوم شناسی در مقیاس های مختلف زمانی و مکانی بر روی حیات وحش دارد. تهدیدات موجود در پارک ملی گلستان به عنوان نخستین پارک ملی ایران، ازجمله جاده آسیایی تهران - مشهد، گونه کل و بز را از برخی زیستگاههای مناسب جدا کرده و محلهای حضور جمعیت این گونه را جزیرهای نموده است. مدلهای ارزیابی و مطلوبیت زیستگاه، محدوده توزیع گونه و زیستگاه را پیشبینی می کنند، بنابراین میتوانند به عنوان ابزاری مناسب برای اهداف حفاظتی و مدیریتی به کار روند. جهت مدل سازی مطلوبیت زیستگاه کل و بز، از روش تجزیه و تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی در محیط نرمافزار Biomapper در دو فصل پاییز و زمستان استفاده شده است. از نقاط حضور گونه به عنوان متغیر وابسته و از 10 متغیر محیطی به عنوان متغیر مستقل استفاده شد. این لایهها پس از تهیه وارد تجزیه و تحلیل گردیدند. نقشه مطلوبیت زیستگاه تهیه شده در این مطالعه برای گونه کل و بز بیانگر این است که زیستگاه مطلوب کل و بز در پارک ملی گلستان در شیبهای بالاتر از ٪20 و مناطقی با ضریب زبری بالا جهت برخورداری از بیش ترین مناطق گریز و امنیت است. براساس مقادیر تخصص گرایی، مهم ترین عوامل مؤثر در آشیان بوم شناختی کل و بز در فصلهای پاییز و زمستان به ترتیب ضریب زبری، درصد شیب، فاصله از جاده و فاصله از پاسگاه های محیط بانی است. با افزایش ضریب زبری، درصد شیب و فاصله از روستا میزان مطلوبیت زیستگاه کل و بز افزایش می یابد. هم چنین بذر بلوط نقش بسیار مهمی در افزایش وسعت گستره خانگی کل و بز در مناطق جنگلی در فصل پاییز دارد.
http://www.aejournal.ir/article_68428_c5c31eeec38edd179363290843ba9980.pdf
2018-06-22
13
22
کل و بز
مدلسازی مطلوبیت زیستگاه
تحلیل عاملی آشیان بوم شناختی
پارک ملی گلستان
میثم
مددی
maysam.mm65@chmail.ir
1
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی:15739-49138
LEAD_AUTHOR
عبدالرسول
سلمان ماهینی
a_mahini@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی:15739-49138
AUTHOR
حسین
وارستهمرادی
hvarasteh2009@yahoo.com
3
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی:15739-49138
AUTHOR
آخانی، ح.، 1383. فلور مصور پارک ملی گلستان. جلد اول. موسسه انتشارات و چاپ دانشگاه تهران. تهران.
1
باقری، م.، 1389. مدل سازی زیستگاه و برآورد تراکم جمعیت گورخر ایرانی در پارک ملی توران. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده منابع طبیعی دانشگاه صنعتی اصفهان. 115 صفحه.
2
حسینی، س.م.؛ ریاضی ب.؛ شمس اسفندآباد، ب. و نادری، م.، 1396. ارزیابی مطلوبیت زیستگاه کل و بز در استان گلستان. فصل نامه محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 2، صفحات 9 تا 16.
3
خاکی صحنه، س.؛ کابلی، م.؛ علیزاده، ا. و نوری، ز.، 1391. بررسی پارامترهای موثر در پراکندگی پازن در منطقه حفاظت شده لشگردر استان همدان. فصل نامه محیط زیست جانوری. سال 4، شماره 1، صفحات 21 تا 37.
4
سرهنگ زاده، ج.؛ یاوری، ا.؛ همامی، م.؛ جعفری، ح. و شمس اسفندآباد، ب.، 1390.مدل سازی مطلوبیت زیستگاه گونه های حیات وحش در مناطق خشک (مطالعه موردی کل و بز (Capra aegagrus) در منطقه حفاظت شده کوه بافق). فصل نامه خشک بوم. جلد 1، شماره 3، صفحات 38 تا 50.
5
شیرزاد، م.؛ ریاضی، ب.، و توکلی، م.، 1391. تهیه نقشه مطلوبیت زیستگاهی پازن در پارک ملی خجیر با استفاده از روش ENFA. فصل نامه محیط زیست جانوری. سال 4، شماره 3، صفحات 21 تا 37.
6
ضیایی، ه.، 1381. مجموعه گزارش های مطالعات طرح جامع مدیریت مجموعه مورد حفاظت توران. حیات وحش و آبزیان جلد یازدهم.
7
عباسیان، ح.، 1380. بررسی ارتباط بزکوهی با زیستگاهش در منطقه خرمدشت کلاردشت. دانشگاه تربیت مدرس. دانشکده منابع طبیعی و علوم دریایی نور.
8
فراشی، آ.؛ مومنی، ا. و کابلی، م.، 1389. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه بز و پازن (Capra aegagrus) به کمک روش تحلیل فاکتوری آشیان بوم شناختی (ENFA) در پارک ملی کلاه قاضی استان اصفهان. مجله منابع طبیعی ایران. دوره 63، شماره 1، صفحات 63 تا 73.
9
فرهمند، م.، 1380. بررسی عوامل موثر بر پراکنش سمداران پارک ملی کلاه قاضی. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده منابع طبیعی کرج، دانشگاه تهران. 84 صفحه.
10
گل جانی، ر.؛ کابلی، م.؛ کرمی، م.؛ نعیمی، ب. و علیزاده، ا.، 1389. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه پاییزه گوسپند وحشی البرز مرکزی در مجموعه حفاظت شده جاجرود. نشریه محیط زیست طبیعی. دوره 63، صفحات 173 تا 186.
11
گلزار، ا.؛ جومردبانی، ب. و پورشیرزاد، ع.، 1391. ارزیابی زیستگاه بز و پازن در منطقه حفاظت شده تنگ سولک به کمک روش HEP. همایش حفاظت و برنامه ریزی محیط زیست.
12
مصطفوی، م.، 1387. تهیه نقشه مطلوبیت زیستگاه بهاره گونه پازن در پارک ملی لار. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات. 112 صفحه.
13
Hirzel, A., 2004. Biomapper 3 user, s manual.
14
Hirzel, A.H., 2001. When GIS come to life. Linking landscape and population ecology for large population management modeling: the case of ibex (Capra ibex) in Switzerland. PhD thesis. Institue of Ecology. Laboratory for Conservation Biology. University of Lausanne.
15
Hirzel, A.H. and Arlettaz, R., 2003. Modeling Habitat Suitability for Complex Species Distribution by Environmental Distance Geometric Mean. Environmental Management. Vol. 32, pp: 614-623.
16
Hirzel, A.; Hausser, J.; Chessel, D. and Perrin, N., 2002. Ecological Niche Factor Analysis: how to compute habitat suitability maps without absence data? Ecology. Vol. 83, pp: 2027-2036.
17
Hirzel, A.H.; Le Lay, G.; Helfer, V.; Randin, C. and Guisan, A., 2006. Evaluating the ability of habitat suitability models to predict species presences. Ecological Modeling. Vol. 199, pp: 142-152.
18
Sappington, J.M..; Longshore, K.M. and Thompson, D.B., 2007. Quantifying landscape ruggedness for animal habitat analysis: a case study using bighorn sheep in the Mojave Desert. Journal of Wildlife Management. Vol. 71, pp: 1419-1421.
19
Cayela, L.; Golicher, J.; Newton, A.C.; Kolb, M.; Albuquerque, F.S; Arets, E.J.M.M.; Alkemade, J.R.M. and Perez, A.M., 2009. Species distribution modeling in the tropics: problems, potentialities, and the role of biological data for effective species conservation. Tropical Conservation Science. Vol. 2, pp: 319-352.
20
Vetaas, O.R., 2002. Realized and potential climate niches: a comparison of four Rhododendron tree species. J. Biogeogr. Vol. 29, pp: 545-554.
21
Phillips, S.J.; Dudik, M. and Schapire, R.E., 2004. A maximum entropy approach to species distribution modeling. In: Proceed of the 21st Int. conf. on Machine Learning, AcM Press, New York. pp: 655-662.
22
ORIGINAL_ARTICLE
مدل سازی مطلوبیت زیستگاه کل و بز (Capra aegagrus) در منطقه حفاظتشده دنا با استفاده از الگوریتم آنتروپی بیشینه (MAXENT)
آگاهی از عوامل مؤثر بر مطلوبیت زیستگاه گونهها و محدوده پراکنش زیستگاههای مطلوب اهمیت اساسی در برنامهریزی بهمنظور مدیریت و حفاظت گونههای حیاتوحش دارد. کل و بز بهعنوان شاخصترین پستاندار مناطق کوهستانی ایران است که در بسیاری از مناطق کوهستانی ایران پراکنش دارد. منطقه حفاظتشده دنا با وسعتی معادل 93820 هکتار در 36 کیلومتری شهر یاسوج مرکز استان کهگیلویه و بویراحمد قرار دارد کل و بز گونه شاخص منطقه دنا می باشد. هدف از مطالعه موردنظر بررسی وضعیت پراکنشی کل و بز در منطقه دنا و دنای شرقی است. دادههای نقاط حضور گونه درفصل بهار جمعآوری به صورت تصادفی و به دودسته تعلیمی (Training data) و آزمون (Test data) تقسیم شدند. سپس متغیرهای زیستگاهی دیگر وارد مدل MaxEnt شدند. نتایج حساسیتسنجی جک نایف مشخص کرد که فاصله از مناطق صخره ای، فاصله از جنگل و زبری مهمترین متغیرهای مؤثر در مطلوبیت زیستگاه هستند نتایج مطالعه نشان داد که زیستگاه مطلوب گونه در مناطق صخرهای دور از مناطق انسانساخت قرار دارد و گونه به مناطق با پوشش گیاهی کم تراکم، دارای پستی بلندی زیاد تمایل دارد.
http://www.aejournal.ir/article_68536_367e854aebc7426323e01c9de36d5df5.pdf
2018-06-22
23
30
کل و بز
مدلسازی مطلوبیت زیستگاه
دنا
MAXENT
میرمهرداد
میرسنجری
mehrdadmirsanjari@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیطزیست، دانشگاه ملایر
LEAD_AUTHOR
فرنگیس
سخنگو
f.sokhango95@gmail.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیطزیست، دانشگاه ملایر
AUTHOR
بهمن پور، ه. و بالی، ع. 1394. پروژه بین المللی حفاظت از تنوع زیستی در سیمای حفاظتی زاگرس مرکزی، ارزیابی توان اکولوژیک حوزه آبخیز دنا. 124 صفحه.
1
بهداروند، ن.، 1390. مدلسازی حملات اخیر گرگ به انسان در استان همدان، پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران.
2
ضیایی، ه.، 1387. راهنمای صحرایی پستانداران، تهران، انتشارات کانون آشنایی با حیاتوحش.
3
فلاحی، م.؛ کابلی، م.؛ کرمی. م.؛ مهرابی، ع.ا.؛ گل جانی، ر. و مصطفوی، س.م.، 1394. بررسی تأثیر عشایر کوچ رو بر مطلوبیت زیستگاه کل و بز (Capra aegagrus) در پارک ملی لار، دو فصلنامه پژوهشهای محیطزیست. سال 6، شماره 11. صفحات 141 تا 148.
4
مددی، م.؛ سلمان ماهینی، ع. و وارسته مرادی، ح.، 1392. ارزیابی زیستگاه پاییزه کل و بز (Capra aegagrus) در پارک ملی گلستان. دومین همایش ملی حفاظت و برنامهریزی محیطزیست.
5
مشهدیاحمدی، ا.ع.؛ شمس اسفندآباد، بهمن. و گشتاسب میگویی، ح.، 1393. مدلسازی مسیر گدار گوسفند وحشی البرز با استفاده از آنالیز کم ترین هزینه در استان تهران (O.o.arkali & O.o.vigneii). فصلنامه علوم و مهندسی محیط زیست. سال 1، شماره 3، صفحات 41 تا 58.
6
همامی، م.ر.؛ اسماعیلی، س. و سفیانیان، ع.ر.، 1394. پیشبینی پراکنش یوز آسیایی، پلنگ ایرانی و خرس قهوهای در پاسخ به متغیرهای محیطی در استان اصفهان. فصلنامه بومشناسی کاربردی. سال 4، شماره 13، صفحات 51 تا 63.
7
Baldwin, R.A., 2009: Use of maximum entropy modeling in wildlife research. Entropy. Vol. 11, pp: 854-866.
8
Farhadinia, M.S.; Akbari, H.; Mousavi, S.J.; Eslami, M.; Azizi, M.; Shokouhi, J.; Gholikhani, M. and Hosseini Zavarei, F., 2013. Exceptionally long movements of the Asiatic cheetah Acinonyx jubatus venaticus across multiple arid reserves in central Iran. Oryx. Vol. 47, pp: 427-430.
9
Flory, A.R.; Kumar, S.; Stohlgren, T.J. and Cryan, P.M., 2012. Environmental conditions associated withbat white nose syndrome mortality in the north eastern United States. Journal of Applied Ecology. Vol. 49, No.3, pp: 680-689.
10
Geographic distributions. Ecological Modelling. Vol. 190, pp: 231-259.
11
Giovanelli, J.G.R.; DeSiqueira, M.F.; Haddad, C.F.B. and Alexandrino, J., 2010. Modeling a spatially restricted distribution in the Neotropics: how the size of calibration area affects the performance of five presence-only methods, Ecological Modelling. Vol. 221, pp: 215-224.
12
Hirzel, A.H.; Helfer, V. and Metral, F., 2001.Assessing habitat suitability models with a virtualspecies. Ecological Modelling. Vol. 145, pp: 111-121.
13
Hoffman, J.D.; Narumalani, S.; Mishra, D.R.; Merani, P. and Wilson, R.G., 2008. Predicting potential occurrence and spread of invasive plant species along the North Platte River, Nebraska. Invasive Plant Science and Management. Vol. 1, No. 4, pp: 359-367.
14
Jepsen, J.U.; Madsen, A.B.; Karlsson, M.D. and Groth, R., 2005. Predicting distribution and density of European badger (Melesmeles) setts in Denmark, Biodiversity and Conservation. Vol. 14, pp: 3235-3253.
15
Jimenez-Valverde, A. and Lobo, J.M., 2007: Threshold criteria for conversion of probability of species presence to either or presence absence. A cta O ecologica. Vol. 31, pp: 361-369.
16
Katsaounis, C.H., 2012. Habitat use of the endangeredand endemic Cretan Capricorn and impact of domestic goats, Thesis submitted for Master of Science. Faculity of Geo Information Science and Earth Observation, University of Twente.
17
Khan, B.; Ablimit, A.; Khan, G.; Jasra, A.W.; Ali, H.; Ali, R.; Ahmad, E. and Ismail, M., 2015. Abundance, distribution and conservation status of Siberian ibex, Marco Polo and Blue Sheep in Karakoram Pamir mountain area. Journal of King Saud University Science.
18
Liu, C.; White, M. and Newell, G., 2009: Measuring the accuracy of species distribution models: a review. 18th W orld IMA CS/MODSIM Congress, Carins, A ustralia.
19
Malekian, M., 2007. Effects of habitat fragmentation onthe genetic diversity and population structure Petaurubrevicepsspecies in southeastAustralia. The NationalBiotechnology Congress of Iran.
20
Nazeri, M.; Jusoff, K.; Madani, N.; Mahmud, A.R.; Bahman, A.R. and Kumar, L., 2012. Predicting modeling and mapping of Malayan sun bear (Helarctos malayanus) distribution using maximum entropy. PLos ONE. Vol. 7, No. 10. e48104.
21
Olivier, F. and Wotherspoon, S., 2006. Modelling habitat selection using presence only data: Case study of a colonial hollow nesting bird, the snow petrel. Ecological modeling. Vol. 195, pp: 187-204.
22
P Anderson, R.; Dudík, M.; Ferrier, S.; Guisan, A.J.; Hijmans, R.; Huettmann, F. and Zimmermann, E.N., 2006. Novel methods improve prediction of species’ distributions from occurrence data. Ecography. Vol. 29, No. 2, pp: 129-151.
23
Pearson, R.G., 2007. Species distribution modeling forconservation educators and practitioners. American Museum of Natural History. pp: 1-50.
24
Peterson, A.T.; Papes, M. and Eaton, M., 2007. Transferability and model evaluation in ecological niche modeling: a comparison of GARP and Maxent, Ecography. Vol. 30, pp: 550-560.
25
Phillips, S.J. and Dudik, M., 2008. Modeling of species distributions with Maxent: New extensions and a comprehensive evaluation. Ecography. Vol. 31, pp: 161-175.
26
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006: Maximum entropy modeling ofspecies geographic distributions. Ecological modelling. Vol. 190, pp: 231-259.
27
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological Modelling. Vol. 190, pp: 231-259.
28
Rahim, M., 2016. Influence of Environmental Variables on Distribution of Wild Goat (Capra aegagrus), in Iraq by Maxent. American Scientific Research Journal for Engineering, Technology, and Sciences (ASRJETS). Vol. 18, No. 1, pp: 97-107.
29
Rushton, J.P.; Skuy, M. and Bons, T.A., 2004.Construct Validity of Raven's Advanced Progressive Matrices for African and Non‐African Engineering Students in South Africa. International Journal ofSelection and Assessment. Vol. 12, No. 3, pp: 220-229.
30
Bagchi, S. and Ritchie, M.E., 2010. Herbivore ects on above and belowground plant production and soil nitrogen availability in the Trans-Himalayan shrub steppe, Oecologia. Vol. 164, pp: 1075-1082.
31
Sarhangzadeh, J.; Yavari, A.R.; Hemami, M.R.; Jafari, H.R. and Shams Esfandabad, B., 2013: Habitatsuitability modeling for wild goat (Capra aegagrus) in a mountainous arid area, central Iran Caspian Journal ofEnvironmental Science. Vol. 11, pp: 41-51.
32
Thorn, J.S.; Nijman, V.; Smith, D. and Nekaris, K.A.I., 2009. Ecological niche modelling as a technique for assessing threats and setting conservation priorities for Asian slow lorises (Primates: Nycticebus). Diversity and Distributions. Vol. 15, pp: 289-298.
33
Williams, A.K., 2003. The influence of probability of detection when modeling species occurrence using GIS and survey data: Virginia Polytechnic Institute and State University. 281 p.
34
Wilting, A.; Cord, A.; Hearn, A.J.; Hesse, D.; Mohamed, A.; Traeholdt, C.; Cheyne, S.M.; Sunarto, S.; Jayasilan, M.A.; Ross, J.; Shapiro, A.C.; Sebastian, A.; Dech, S.; Breitenmoser, C.; Sanderson, J.; Duckworth, J.W. and Hofer, H., 2010. Modelling the species distribution of Flat headed cat (Prionailurus planiceps), an endangered south-east Asian Small Felid, PLos ONE. Vol. 5, No. 3. e9612.
35
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر مخلوط تجاری روغن های اسانسی اسید رسینولئیک، کاردانول و کاردول بر تولید و ترکیبات شیر و فراسنجه های خونی گاوهای شیری هلشتاین
به منظور ارزیابی تأثیر افزودنی خوراکی Essential® (مخلوط تجاریاسانسهای گیاهی اسید رسینولئیک، کاردانول و کاردول) بر تولید شیر، ترکیبات شیر و فراسنجههای خون از 20 رأس گاو شیرده هلشتاین با میانگین روزهای شیردهی 20±80 در قالب طرح کاملاً تصادفی استفاده شد. تیمارهای آزمایشی شامل: شاهد (بدون اسانس) و تیمار اسانس گیاهی (حاوی اسانس گیاهی Essential® به مقدار 13/5 گرم در روز به ازاء هر رأس گاو) بود. جیره کاملاً مخلوط حاوی 41/6 درصد یونجه، 2/83 درصد پنبه دانه و 55/57 درصد کنسانتره (براساس ماده خشک) به صورت آزاد به دامها خورانده شد. نتایج نشان داد افزودن اسانس گیاهی Essential® تأثیر معنیداری بر میزان تولید شیر و تولید شیر تصحیح شده براساس 4 % چربی نداشت، اما از لحاظ عددی افزایش در تولید شیر تیمار حاوی اسانس گیاهی نسبت به تیمار شاهد مشاهده شد (0/05<P). ترکیبات شیر دامها ازجمله پروتئین، چربی و لاکتوز شیر به طور معنیداری تحت تأثیر اسانس گیاهی قرار نگرفت. بین تیمارهای آزمایشی تفاوت معنیداری در سطوح گلوکز، تری گلیسرید، اوره، آلبومین، پروتئین کل، لیپوپروتئین با چگالی بالا، لیپوپروتئین با چگالی پایین خون و آنزیمهای کبدی مشاهده نشد ولی سطوح کلسترول، الون دیآلدهید و ظرفیت آنتیاکسیدنی کل افزایش معنی داری در تیمار حاوی اسانس نسبت به تیمار شاهد داشت (0/05>P). نتایج آزمایش نشان دهنده عدم تأثیر معنیدار اسانس گیاهیEssential® بر عملکرد تولیدی کوتاه مدت گاوهای شیری هلشتاین است ولی با توجه به تأثیر افزودن اسانس Essential® بر ظرفیت آنتی اکسیدانی در دامهای مورد آزمایش میتوان تأثیرات مثبت این اسانس بر سلامت دام را انتظار داشت.
http://www.aejournal.ir/article_68543_935d72d431285a239d532ddea3f05967.pdf
2018-06-22
31
36
اسانس گیاهی
تولید شیر
فراسنجه های خونی
ظرفیت آنتی اکسیدانی
حمید
اصغری
asghari.hamid6970@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی اهر، دانشگاه تبریز
AUTHOR
محمدرضا
شیخلو
mr.sheikhlou@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی اهر، دانشگاه تبریز
LEAD_AUTHOR
رشید
صفری
rashid.safari@gmail.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی اهر، دانشگاه تبریز
AUTHOR
مقصود
بشارتی
m_besharati@hotmail.com
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی اهر، دانشگاه تبریز
AUTHOR
امیر
کریمی
karimi.amir@gmail.com
5
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی اهر، دانشگاه تبریز
AUTHOR
Adham, A.A.; Bassiony, M.S.; Abdel Rahman, G.A. and Shehata, A.S., 2014. Effect of cinnamaldehydethymol mixture on growth performance and some ruminal and blood constituents in growing lambs fed high concentrate diet. Jornal of Life Science. Vol. 11, pp: 240-248.
1
Angela, J.F.; Alberto, D.G.; Juan, M.H.V.; Karen, A.B. and Dario, C., 2013. Effects of specific essential oil compounds on the ruminal environment, milk production and milk composition of lactating dairy cows at pasture. Jornal of Animal Feed Science and Technology. Vol. 186, pp: 20-26.
2
Benchaar, C.; Petit, H.V.; Berthiaume, R.; Ouellet, D.R.; Chiquette, J. and Chouinard, P.Y., 2007. Effects of essential oils on digestion, ruminal fermentation, rumen microbial populations, milk production, and milk composition in dairy cows fed alfalfa silage or corn silage. Jornal of Dairy Science. Vol. 90, pp: 886-897.
3
Benchaar, C.; Petit, H.V.; Berthiaume, R.; Whyte, T.D. and Chouinard, P.Y., 2006. Effects of addition of essential oils and monensin premix on digestion, ruminal fermentation, milk production, and milk composition in dairy cows. Jornal of Dairy Science. Vol. 89, pp: 4352-4364.
4
Busquet, M.; Calsamiglia, S.; Ferret, A. and Kamel, C., 2006. Plant extracts affect in vitro rumen microbial fermentation. Jornal of Dairy Science. Vol. 89, pp: 761-771.
5
Busquet, M.; Calsamiglia, S.; Ferret, A.; Cardoza, P.W. and Kamel, C., 2005. Effects of cinnamaldehyde and garlic oil on rumen microbial fermentation in a dual flow continuous culture. J of dairy science. Vol. 88, pp: 2508-2516.
6
Chaves, A.V.; Stanford, K.; Dugan, M.E.R.; Gibson, L.L.; McAllister, T.A.; Van Herk, F. and Benchaar, C., 2008. Effects of cinnamaldehyde, garlic and juniper berry essential oils on rumen fermentation, blood metabolites, growth performance, and carcass characteristics of growing lambs. Jornal of Livestock Science. Vol. 117, pp: 215-224.
7
Cho, S.Y.; Jun, H.J.; Lee, J.H.; Jia, Y.; Kim, K.H. and Lee, S.J., 2011. Linalool reduces the expression
8
of 3-hydroxy-3-methylglutaryl CoA reductase via sterol regulatory element binding protein-2- & ubiquitin dependent mechanisms. FEBS Letters. Vol. 585, pp: 3289-3296.
9
Crowell, P.L., 1999. Prevention and therapy of cancer by dietary monoterpenes. J of Nutrition. Vol. 129, pp: 775-778.
10
Wall, E.H.; Doane, P.H.; Donkin, S.S. and Bravo, D., 2014. The effects of supplementation with a blend of cinnamaldehyde and eugenol on feed intake and milk production of dairy cows. Journal of Dairy Science. Vol. 97, pp: 5709-5717.
11
Gandra, J.R.; Nunes Gil, P.C.; Cônsolo, N.R.B.; Gandra, E.R.S. and Gobesso, A.A.O., 2012. Addition of increasing doses of ricinoleic acid from castor oil (Ricinus communis L.) in diets of Nellore steers in feedlots. Journal of Animal and Feed Sciences. Vol. 21, pp: 566-576.
12
Kamatou, G.P.P.; Makunga, N.P.; Ramogola, W.P.N. and Viljoen, A.M., 2008. South African Salvia species: A review of biological activities and phytochemistry. Journal of Ethnopharmacology. Vol. 119, pp: 664-672.
13
Khorami, B.; Vakili, A.R.; Danesh Mesgaran, M., 2014. The effects of some essential oils on feedstuff degradability, nutrient digestibility and performance of Holstein feedlot calves, Animal Science Researches. Vol. 24, pp: 137-150.
14
Kung, L.Jr.; Williams, P.; Schmidtand, R.J. and Hu, W., 2008. A blend of essential plant oils used as an additive to alter silage fermentation or used as a feed additive for lactating dairy cows. J of dairy science. Vol. 91, pp: 4793-4800.
15
NRC. 2001. Nutrient Requirements of Dairy Cattle. 7th ed. National Academy Press. Washington. D.C., USA.
16
Orskov, E.R. and McDonal, I., 1979. The estimation of protein degradability in the rumen from incubation measurements weighted according to rate of passage Jornal of Agricultural Science. Vol. 92, pp: 499-503.
17
Reza Yazdi, K.; Fallah, M.; Khodaparast, M.; Kateb, F.; Hosseini Ghaffari, M., 2014. Effects of specific essential oil compounds on, eeed intake, milk production, and ruminal environment in dairy cows during Heat Exposure. Jornal of Biological, Veterinary, Agricultural and Food Engineering. Vol. 8, pp: 12-19.
18
Serbester, U.; C ̧ınar, M.; Ceyhan, A.; Erdem, H.; Görgülü, M.; Kutlu, H.R.; Baykal C ̧ elik, L.; Yücelt, Ö. and Cardozo, P.W., 2012. Effect of essential oil combination on performance, milk composition, blood parameters and pregnancy rate in early lactating dairy cows during heat exposure. Journal of Animal Plant Sciences. Vol. 22, pp: 556-563
19
Tager, L.R. and Krause, K.M., 2011. Effects of essential oils on rumen fermentation, milk production, and feeding behavior in lactating dairy cows. Journal of Dairy Science. Vol. 94, pp: 2455-2464.
20
Tassoul, M.D. and Shaver, R.D., 2003. Effect of a mixture of supplemental dietary plant essential oils on performance of per parturient and early lactation dairy cows. Journal of Dairy Science. Vol. 92, pp: 1734-1740.
21
Vakili, A.R.; Khorrami, B.; DaneshMesgaran, M. and Parand, E., 2013. The effects of thyme and cinnamon essential oils on performance, rumen fermentation and blood metabolites in Holstein calves consuming high concentrate diet. Asian Australasian Journal of Animal Science. Vol. 7, pp: 935-944.
22
Yang, W.Z.; Ametaj, B.N.; He, M.; Benchaar, C. and Beauchemin, K.A., 2010. Cinnamaldehyde in feedlot cattle diets: intake, growth performance, carcass characteristics, and blood metabolites. Journal of Animal Science. Vol. 88, pp: 1082-1092.
23
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه خصوصیات مورفومتریک در جوندگان (مطالعه موردی: جربیل هندی (Tatera indica) در جیرفت و زابل)
جربیل هندی (Tatera indica) زیرخانواده جربیل و متعلق به خانواده Muridae میباشد. این گونه در اکثر نقاط از جمله نواحی خشک و نیمهبیابانی، رودخانهها، محدودههای زیرکشت و دو طرف کانالهای آبیاری و زهکشی یافت میشود و معمولاً قدرت سازگاری بالایی دارد. این گونه از اهمیت اکولوژیکی زیادی برخوردار است چرا که حلقه اصلی زنجیره و چرخه غذایی در طبیعت را برای جانورانی نظیر جغد، شغال، روباه، مار و پرندگان شکاری تشکیل می دهد جربیل هندی با خوردن دانههای گیاهان و دفع آن ها در مناطق دیگر، در عین این که به پراکنش بذرکمک میکند، از طرفی به عنوان مهم ترین آفت محصولات کشاورزی در میان مهره داران محسوب می شود. جوندگان از مهم ترین طبقاتی هستند که مطالعه آن ها به لحاظ اثرات مثبت و منفی که در عرصه های مختلف هم چون کشاورزی یا بهداشت و... دارند لازم به نظر می رسد. لذا این پژوهش با هدف بررسی مورفومتریک جربیل هندی با تله گذاری در زیستگاه های مختلف در دو شهرستان جیرفت و زابل، در اسفندماه 1395 و فروردین 1396 انجام شد. در این مطالعه به تعداد 15 نمونه توسط تله کشنده و زندهگیر صید و صفات ریخت شناسی (ریخت سنجی ظاهری) و 15 صفت جمجمهای و دندانی در نمونهها اندازهگیری و با استفاده از نرم افزار SPSS نسخه 22 مورد بررسی قرار گرفت. نتایج حاصل از آزمون( Nonparametric Mann- Whitney (U test نشان داد که بین همه متغیرهای اندازهگیری شده در هر دو منطقه اختلاف معنی دار وجود دارد (0/05>P) و صفات اندازهگیری شده در گونه های جربیل جیرفت نسبت به زابل بزرگ تر بودند.
http://www.aejournal.ir/article_66002_f9dddf7c40b221ba32ff9234c910c92c.pdf
2018-06-22
37
44
جربیل هندی
مورفومتریک
جوندگان
زیستگاه
مریم
مروتی
maryam_morovati147@yahoo.com
1
گروه محیط زیست،دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی،دانشگاه اردکان، اردکان،ایران
LEAD_AUTHOR
فاطمه
بهادری امجز
fateme.bahadori95@gmail.com
2
گروه محیط زیست،دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی،دانشگاه اردکان، اردکان،ایران
AUTHOR
سعید
محمدی
smohammadi@uoz.a.cir
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه زابل، زابل، ایران
AUTHOR
جعفری،ک. و سودی،س.،1390. کارایی جونده کش دیفاناکوم در کنترل جوندگان افت مناطق کشاورزی زنجان و ورامین. اولین کنگره ملی و علوم و فناوری های نوین کشاورزی دانشگاه زنجان.
1
دهقانی، ر.؛ سیدی، ح.ر.؛ دهقان،س. و شریفی، ه.،1391. مروری بر پراکندگی جغرافیایی موش ها و بیماری های منتقله به وسیله آن ها در ایران. دو ماهنامه فیض. دوره 17، شماره 2.
2
زارعی، ر.؛ درویش، ج.؛ اسماعیلی، ح.ر. و ترحمی، م.،1388. بررسی بیوسیستماتیکی جوندگان شیراز (بخش مرکزی). مجله زیست شناسی ایران. جلد 23، شماره 4، صفحات573 تا 583.
3
سرگزی اول، ح. و فدایی قطبی، م.، 1395. طراحی فضای شهری با رویکرد افزایش سرزندگی(نمونه موردی: خیابان امام خمینی زابل). اولین کنفرانس علمی پژوهشی عمران، معماری و محیط زیست پایدار تهران. خرداد.
4
ضیائی، ه.، 1390. راهنمای صحرائی پستانداران ایران.کانون آشنایی با حیات وحش. تهران. صفحات 203 تا 204.
5
علایی، س. و خلیل آریا، ع.، 1392. جوندگان از جانداران بسیار مهم زیست محیط های انسانی. سومین همایش ملی سلامت، محیط زیست و توسعه پایدار.
6
فلاح نژادمجرد، ن. و عفتی، ع.، 1393. بررسی تداوم کارایی سموم جونده کش ضدانعقادی نسل دوم در برنامه های کنترل جوندگان در سازمان میادین میوه، تره بار و فرآورده های کشاورزی شهرداری تهران. اولین همایش ملی بهداشت محیط، سلامت و محیط زیست پایدار.
7
قدیریان، ط.؛ کرمی، م.؛ دانه کار، ا. و همامی، م.، 1388. برآورد تراکم لانه ها و عوامل موثر بر لانه گزینی موش سیاه (Rattus rattus) در جنگل های مانگرو ذخیره گاه زیست کره حرا. فصلنامه علوم و تکنولوژی محیط زیست. سال 11، شماره4، صفحات 649 تا 657.
8
محمدی،س.؛ و شیخی زاده اول،ح.، 1395. مطالعه فون جوندگان شهرستان فردوس. مجله زیست شناسی جانوری تجربی. سال 5، شماره 1، صفحات 93 تا 103.
9
محمدی، س.؛ صباغ زاده، ع.؛ ایمانی، ج.؛ بهداروند، ن.؛ پهلوان روی، ا.ع.، 1393. شناسایی عوامل موثر بر حضور جربیل هندی (Tatera indica Hardwicke,1807) در زیستگاه های بیابانی و نیمه بیابانی با استفاده از روش رگرسیون منطقی دوتایی (مطالعه موردی: زابل). دو فصلنامه خشک بوم. دوره 4، شماره 1، صفحات 31 تا 41.
10
مهندسینمشاورآمودان. 1390. بازنگری طرح جامع شهر جیرفت، اداره کل راه و شهرسازی کرمان.
11
مهندسین مشاور شهرساز و معمار طاش. 1386. طرح جامع شهر زابل، وزارت مسکن و شهرسازی استان سیستان و بلوچستان.
12
یغفوری،ح.؛ فتوحی،ص. و آبرکار،ز.، 1395. بررسی تطبیقی پارک های ناحیه ای و محل های موجود در شهر جیرفت و مکان یابی بهینه آن ها با استفاده از سیستم اطلاعات جغرافیایی. فصلنامه جغرافیا و توسعه. سال 14، شماره 44، صفحات165 تا188 .
13
Berger, P.J.; Negus, N.C. and Rowsemitt, C.N., 1987. Effect of 6-methoxybenzoxazolinone on sex ration and breeding performance in Microtus montanus. Biology of Reproduction. Vol. 35, pp: 355-360.
14
Gromov, V.S.; Krasnov, B.R. and Shenbrot, G.I., 2000. Space use in Wagner`s gerbil Gerbillus dasyurus in the Negev Highlands, Israel. Acta Theriologica. Vol. 45, No. 2,pp: 175-182.
15
Hamidi, K.; Mehraban, H. and Darvish, J., 2013. Preliminary study of rodents` fauna (mammalia; rodentia) of khaftownship, southeast of khorasan Razavi province, Iran, using pellets of birds of prey.
16
Khajeh, A. and Meshkani, J., 2010. A Study of Intraspecies Variations of Indian Gerbil, Tatera indica Hardwicke, 1807 (Muridae, Rodentia) in Eastern Border of Iran. Pakistan Journal of Biological Sciences. Vol. 13, No. 2; pp: 59-65.
17
Mirshamsi, O.; Darvish, J. and Kayvanfar, N., 2007. A Preliminary study on Indian Gerbils, Tatera indica at population level in eastern and southern parts of Iran (Rodentia: Muridae). Iranian Journal of Animal Biosystematics(IJAB). Vol. 3, No. 1, pp: 49-61.
18
Mohammadi, S. and Parvizi, P., 2014. Simultaneous Morphological and Molecular Characterization of Tatera indica in Southwestern Iran. J Arthropod-Borne Dis, March Vol. 10, No. 1, pp: 55-64.
19
Mohammadi, Z.; Darvish, J.; Haddad, F. and Ghorbani, F., 2012. A Karyological study of some Murid Rodents (Rodentia: Muridae) of Iran. Progress in Biological Sciences Vol. 2, No. 1, pp: 30-39
20
Yigit, N.; Colak, E.; Verimli, R.; Ozkurt, S. and Sozen, M., 2000. A Study on the Distribution, Morphology and Karyology of Tatera indica (Hardwicke, 1807) (Mammalia; Rodentia) in Turkey. Turk J Zool. Vol. 25, pp: 67-70.
21
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات مورفین سولفات بر سطح گلوتامات هیپوتالاموسی و غلظت سرمی هورمون LH در موش های صحرایی نر
مورفین از طریق تاثیر بر فعالیت مسیرهای نورونی واسطه ای مختلف داخل هیپوتالاموسی اثرات مهاری بر ترشح هورمون LH اعمال می کند. در تحقیق حاضر، اثرات مورفین سولفات بر ترشح LH از طریق مسیر گلوتاماترژیک در موش های صحرایی نر بررسی گردید. بیست موش صحرایی نر بالغ نژاد ویستار به وزن 250-200 گرم در چهار گروه (در هر گروه 5=n) قرار گرفته، گروه های 1 و 2 سالین و گروه های 3 و 4 یک میکروگرم مورفین را از طریق تزریق درون بطنی مغزی دریافت کردند. در گروه های 1 و 3 نمونه های خونی قبل از تزریق و 30 دقیقه بعد از تزریق سالین یا مورفین جمع آوری و نمونه های هیپوتالاموسی جدا گردید. در گروه های 2 و 4 نمونه های خونی قبل از تزریق و 60 دقیقه بعد از تزریق سالین یا مورفین جمع آوری و نمونه های هیپوتالاموسی جدا گردید. غلظت سرمی هورمون LH با روش رادیوایمونواسی (RIA) و سطوح گلوتامات هیپوتالاموسی با استفاده از کروماتوگرافی مایع با کارایی بالا (HPLC) اندازه گیری شد. مورفین میانگین غلظت سرمی LH را در 30 یا 60 دقیقه بعد از تزریق در مقایسه با قبل از تزریق کاهش داد که این میزان کاهش تنها در گروه 60 دقیقه از نظر آماری معنی دار بود. هم چنین، با تزریق مورفین میانگین غلظت گلوتامات هیپوتالاموس در 30 دقیقه بعد از تزریق در مقایسه با گروه 30 دقیقه بعد از تزریق سالین از نظر آماری به طور معنی داری کاهش یافت. کاهش فعالیت نورون های گلوتاماتی هیپوتالاموس ممکن است در مسیرهای عصبی کنترل کننده اثرات مورفین بر ترشح LH دخالت داشته باشد.
http://www.aejournal.ir/article_68558_8e815e0f286ca5765833c83e798b73e3.pdf
2018-06-22
45
50
مورفین
گلوتامات
LH
هیپوتالاموس
مهری
باقری پور
mehribagheripoor@gmail.com
1
دانشگاه شهید بهشتی، دانشکده علوم زیستی، ایران، تهران
LEAD_AUTHOR
همایون
خزعلی
homayoun_khazali@yahoo.com
2
دانشگاه شهید بهشتی، دانشکده علوم زیستی، ایران، تهران
AUTHOR
فریبا
محمودی
faribamahmoudi_14@yahoo.com
3
دانشگاه محقق اردبیلی، دانشکده علوم ، گروه زیست شناسی، ایران، اردبیل
AUTHOR
کیوان دخت
سمیعی
k.samiee@yahoo.com
4
دانشگاه شهید بهشتی، دانشکده علوم زیستی، ایران، تهران
AUTHOR
Ahmad, I. and Pleuvry, B.J., 1955. Interactions between opioid drugs and. propofol in laboratory Bartosz B, Grzegorz H (2009). Effects of morphine and methadone treatments on glutamatergic transmission in rat frontal cortex. Pharmacological Reports. Vol. 61, No. 6, pp: 1192-1197.
1
Beltran-Campos, V.; Silva-Vera, M.; García-Campos, M.L. and Díaz-Cintra, S., 2015. Effects of morphine on brain plasticity. Neurologia. Vol. 30, No. 3, pp: 176-80.
2
Ceccarelli, I.; De Padova, A.M.; Fiorenzani, P.; Massafra, C. and Aloisi, A.M., 2006. Single opioid administration modifies gonadal steroids in both the CNS and plasma of male rats. Journal of Neuroscience. Vol. 140, pp: 929-937.
3
Eyigor, O.; Centers, A. and Jennes, L., 2001. Distribution of ionotropic glutamate receptor subunit mRNAs in the rat hypothalamus. Journal of Comparative Neurology. Vol. 434, pp: 101-124.
4
Fayez, M.; Ahmed, H.H.; el Nabarawy, F.; Shokery, I.M. and Bauomy, A.M., 1991. Effects of butorphanol on luteinizing hormone and follicle stimulating hormone levels in ovariectomized rats comparative study with morphine sulphate. Archive for Experimental Veterinary Medicine. Vol. 45, pp: 101-103.
5
Gurjinder, K. and Gurcharan, K., 2001. Role of cholinergic and GABAergic neurotransmission in the opioids-mediated GnRH release mechanism of EBP-primed OVX rats. Molecular and Cellular Biochemistry. Vol. 219, pp: 13-19.
6
He, D.; Mitsushima, D.; Uemura, T.; Hirahara, F.; Funabashi, T.; Shinohara, K. and Kimura, F., 2000. Effects of naloxone on the serum luteinizing hormone level and the number of Fos-positive gonadotropin-releasing hormone neurons in immature female rats. Brain Research. Vol. 85, pp: 129-135.
7
Kreeger, J.S.; Yukhananov, A.A. and Larson, Y.R., 1955. Altered N-Methyl-D- aspartate (NMDA) activity in the mouse spinal cord following morphine is mediated by sigma activity. Brain Research. Vol. 672, pp: 83-88.
8
Law, P.Y.; Wong, Y.H. and Loh, H.H., 2000. Molecular mechanisms and regulation of opioid receptor signaling. Annual Review of Pharmacology and Toxicology. Vol. 40, pp: 389-430.
9
Pages, N.; Orosco, M.; Fournier, G.; Rouch, C.; Hafi, A.; Gourch, A.; Comoy, E. and Bohuon, C., 1991. The effects of chronic administration of morphine on the levels of brain and adrenal catecholamines and neuropeptide Y in rats. General Pharmacology. Vol. 22, pp: 943-947.
10
Mahmoudi, F.; Khazali, H. and Janahmadi, M., 2014. Molecular interactions of kisspeptin/GPR54 signaling system and morphine on LH hormone secretion in wistar rats. International Journal of Fertility and Sterility. Vol. 8, No. 2, pp: 215-220.
11
Mustafa, S.; Hashim, W.; Khaliq, S. and Azizuddin Khan, R.A., 2014. An improved high performance liquid chromatographic method for tryptophan analysis in rat brain administrated by seaweed. Journal of Analytical and Bioanalytical Techniques. Vol. 5, pp: 188.
12
Pasternak, G.W., 1993. Pharmacological mechanisms of opioid analgesics. Clinical Neuropharmacology. Vol. 16, No. 1, pp: 1-18.
13
Mahmoudi, F.; Khazali, H. and Janahmadi, M., 2014. Interactions of morphine and peptide 234 on mean plasma testosterone concentration. International Journal of Endocrinology and Metabolism. Vol. 12, No. 1, pp: 1-5.
14
Schwendt, M. and Jezova, D., 2001. Gene expression of NMDA receptor subunits in rat adrenals under basal and stress conditions. Journal of Physiology and Pharmacology. Vol. 52, No. 4, pp: 719-727.
15
Sherman, A.D. and Gebhart, G.F., 1976. Morphine and pain: Effects on aspartate, gaba and glutamate in four discerete areas of mouse brain. Brain Research. Vol. 110, No. 2, pp: 273-281.
16
Silva-Moreno, A.; Gonzales-Espinosa, C.; Leon-Olea, M. and Cruz, S.L., 2012. Synergistic antinociceptive actions aand tolerance development produced by morphine-fentanyl coadministration: Correlation with μ-opioid receptor internalization. European Journal of Pharmacology. Vol. 674, No. 2-3, pp: 239-247.
17
Xu, B.; Sahu, A.; Kalra, P.S.; Crowley, W.R. and Kalra, S.P., 1996. Disinhibition from opioid influence augments hypothalamic neuropeptide Y (NPY) gene expression and pituitary luteinizing hormone release: effects of NPY messenger ribonucleic acid antisense oligodeoxynucleotides. Endocrinology. Vol. 137, No. 1, pp: 78-84.
18
Yamamoto, R.T. and Kanarek, R.B. 2014. Central and peripheral relationships between morphine and glucose on antinociception in rats. Annals of Neurosciences. Vol. 1, No. 3, pp: 1-6.
19
ORIGINAL_ARTICLE
فعالیت آنتی اکسیدان های تام و اکسیدنیتریک در مایع سمینال موش های نر نژاد Balb/c تیمار شده با غلظت های مختلف نانوذرات نقره
با توجه به نقش نانوذرات نقره در القاء تولید رادیکال های آزاد، در این مطالعه اثرات سمی نانوذرات نقره بر پارامترهای اسپرم، غلظت نیتریک اکسید (NO) و فعالیت آنتی اکسیدان های تام در مایع سمینال موش نر مورد بررسی قرار گرفته است. در این مطالعه تجربی، 24 موش نر بالغ از نژاد سوری به صورت تصادفی به سه گروه تجربی و یک گروه شاهد تقسیم شدند. نانوذرات نقره با غلظت های 0/07 (A گروه)، 0/14 (گروه B) و 0/28 (گروه C) میکروگرم در هر روز، به ترتیب به گروه های اول تا سوم مورد مطالعه و به صورت دهانی به مدت پنج هفته داده شد. سپس فعالیت آنتی اکسیدان های تام و نیتریک اکسید به ترتیب به روش های FRAP(Ferric reducing antioxidant of power) و کیت NO اندازه گیری شد. پارامترهای اسپرمی به روش میکروسکوپی مورد آنالیز قرار گرفتند. کاهش معنی داری در میانگین کیفیت پارامترهای اسپرمی در گروه های تیمار شده با نانوذره، به خصوص گروه های B و C در مقایسه با گروه شاهد مشاهده گردید (0/01>p). تفاوت معنی داری در میانگین غلظت FRAP بین گروه های تیمارشده A(28/14±290/29) ،B(39/32±225/47) ،C(22/73±225/54 و گروه شاهد (19/08±300/18) میکرومول بر لیتر مشاهده گردید (0/001>p). تفاوت معنی داری در میانگین NO نیز مشاهده گردید، به طوری که گروه C بیش ترین میانگین NO را در مقایسه با سایر گروه ها داشت. نانوذرات نقره با کاهش فعالیت آنتی اکسیدان های تام و افزایش NO سبب کاهش پارامترهای اسپرم می گردد که اثرات آن وابسته دوز نیز می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_68801_3158f553170ecc0826cfe2acd518612b.pdf
2018-06-22
51
56
نانوذرات نقره
پارامترهای اسپرم
فعالیت آنتی اکسیدان های تام
نیتریک اکسید
موش های نر
عیسی
لیالی
tahmasb@hotmail.com
1
گروه بیوشیمی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد ساری، ایران، کد پستی: 4816613485
LEAD_AUTHOR
Baki, M.E.; Miresmaili, S.M.; Pourentezari, M.; Amraii, E.; Yousefi, V.; Spenani, H.R.; Talebi, A.R.; Anvari, M.; Fazilati, M.; Fallah, A.A. and Mangoli, E., 2014. Effects of silver nano particles on sperm parameters, number of Leydig cells and sex hormones in rats. Iran J Reprod Med. Vol. 12, No. 2, pp: 139-144.
1
Barkhordari, A.; Barzegar, S.; Hekmatimoghaddam, H.; Jebali, A.; Rahimi Moghadam, S. and Khanjani, N., 2014. The toxic effects of silver nanoparticles on blood mononuclear cells. Int J Occup Environ Med. Vol. 5, No. 3, pp: 164-168.
2
Benzie, I.F. and Strain, J.J., 1996. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of antioxidant power: the FRAP assay. Anal Biochem. Vol. 239, No. 1, pp: 70-76.
3
Cao, X.W.; Lin, K.; Li, C.Y. and Yuan, C.W., 2011. A review of WHO Laboratory Manual for the Examination and Processing of Human Semen (5th edition). Zhonghua Nan Ke Xue. Vol. 17, No. 12, pp: 1059-1063.
4
Chalah, T. and Brillard, J.P., 1998. Comparison of assessment of fowl sperm viability by eosin-nigrosin and dual fluorescence (SYBR-14/PI). Theriogenology. Vol. 50, No. 3, pp: 487-493.
5
Chen, L.Q.; Fang, L.; Ling, J.; Ding, C.Z.; Kang, B. and Huang, C.Z., 2015. Nanotoxicity of silver nanoparticles to red blood cells: size dependent adsorption, uptake, and hemolytic activity. Chem Res Toxicol. Vol. 28, No. 3, pp: 501-509.
6
Colagar, A.H.; Jorsaraee, G.A. and Marzony, E.T., 2007. Cigarette smoking and the risk of male infertility. Pak J Biol Sci. Vol. 10, No. 21, pp: 3870-3874.
7
Colagar, A.H. and Marzony, E.T., 2009. Ascorbic Acid in human seminal plasma: determination and its relationship to sperm quality. J Clin Biochem Nutr. Vol. 45, No. 2, pp: 144-149.
8
Colagar, A.H.; Marzony, E.T. and Chaichi, M.J., 2009. Zinc levels in seminal plasma are associated with sperm quality in fertile and infertile men. Nutr Res. Vol. 29, No. 2, pp: 82-88.
9
De Jong, W.H.; Van Der Ven, T.; Sleijffers, A.; Park, M.V.; Jansen, E.H.; Van Loveren, H. and Vandebriel, R.J., 2013. Systemic and immunotoxicity of silver nanoparticles in an intravenous 28 days repeated dose toxicity study in rats. Biomaterials. Vol. 34, No. 33, pp: 8333-8343.
10
Drescher, D.; Buchner T.; McNaughton, T. and Kneipp, J., 2013. SERS reveals the specific interaction of silver and gold nanoparticles with hemoglobin and red blood cell components. Phys Chem Chem Phys. Vol. 15, No. 15, pp: 5364-5373.
11
Tahmasbpour Marzony, E.; Jorsaraei, S.G.A.; Pouramir, M. and Colagar, A.H., 2012. Seminal Plasma Antioxidant Capacity in Human Semen with Hyperviscosity. Babol University of Medical Science Journal. Vol. 14, No. 16, pp: 39-44
12
Gromadzka-Ostrowska, J.; Dziendzikowska, K.; Lankoff, A.; Dobrzynska, M.; Instanes, C.; Brunborg, G.; Gajowik, A.; Radzikowska, J.; Wojewodzka, M. and Kruszewski, M., 2012. Silver nanoparticles effects on epididymal sperm in rats. Toxicol Lett. Vol. 214, No. 3, pp: 251-258.
13
Hsin, Y.H.; Chen, C.F.; Huang, S.; Shih, T.S.; Lai, P.S. and Chueh, P.J., 2008. The apoptotic effect of nanosilver is mediated by a ROS- and JNK-dependent mechanism involving the mitochondrial pathway in NIH3T3 cells. Toxicol Lett. Vol. 179, No. 3, pp: 130-139.
14
Kermani-Alghoraishi, M.; Anvari, M.; Talebi, A.R.; Amini-Rad, O.; Ghahramani, R. and Miresmaili, S.M., 2010. The effects of acrylamide on sperm parameters and membrane integrity of epididymal spermatozoa in mice. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. Vol. 153, No. 1, pp: 52-55.
15
Komatsu, T.; Tabata, M.; Kubo-Irie, M.; Shimizu, T.; Suzuki, K.; Nihei, Y. and Takeda, K., 2008. The effects of nanoparticles on mouse testis Leydig cells in vitro. Toxicol In Vitro. Vol. 22, No. 8, pp: 1825-1831.
16
Layali, I.; Tahmasbpour, E.; Joulaei, M.; Jorsaraei S.G. and Farzanegi, P., 2015. Total antioxidant capacity and lipid peroxidation in semen of patient with hyperviscosity. Cell J. Vol. 16, No. 4, pp: 554-559.
17
Mangoli, E.; Talebi, A.R.; Anvari, M. and Pourentezari, M., 2013. Effects of experimentally-induced diabetes on sperm parameters and chromatin quality in mice. Iran J Reprod Med. Vol. 11, No. 1, pp: 53-60.
18
Mathias, F.T.; Romano, R.M.; Kizys, M.M.; Kasamatsu, T.; Giannocco, G.; Chiamolera, M.I.; Dias-da-Silva, M.R. and Romano, M.A., 2015. Daily exposure to silver nanoparticles during prepubertal development decreases adult sperm and reproductive parameters. Nanotoxicology. Vol. 9, pp: 64-70.
19
Miresmaeili, S.M.; Halvaei, I.; Fesahat, F.; Fallah, A.; Nikonahad, N. and Taherinejad, M., 2013. Evaluating the role of silver nanoparticles on acrosomal reaction and spermatogenic cells in rat. Iran J Reprod Med. Vol. 11, No. 5, pp: 423-430.
20
Park, Y.S.; Park, S.; Ko, D.S.; Park, D.W.; Seo, J.T. and Yang, K.M., 2014. Observation of sperm-head vacuoles and sperm morphology under light microscope. Clin Exp Reprod Med. Vol. 41, No. 3, pp: 132-136.
21
Tahmasbpour, E.; Balasubramanian, D. and Agarwal, A., 2014. A multi-faceted approach to understanding male infertility: gene mutations, molecular defects and assisted reproductive techniques (ART). J Assist Reprod Genet. Vol. 31, No. 9, pp: 1115-1137.
22
Talebi, A.R.; Khalili, M.A.; Vahidi, S.; Ghasemzadeh, J. and Tabibnejad, N., 2013. Sperm chromatin condensation, DNA integrity, and apoptosis in men with spinal cord injury. J Spinal Cord Med. Vol. 36, No. 2, pp: 140-146.
23
Taylor, U.; Tiedemann, D.; Rehbock, C.; Kues, W.A.; Barcikowski, S. and Rath, D., 2015. Influence of gold, silver and gold-silver alloy nanoparticles on germ cell function and embryo development. Beilstein J Nanotechnol. Vol. 6, pp: 651-664.
24
Yang, H.L.; Lin, J.C. and Huang, C., 2009. Application of nanosilver surface modification to RO membrane and spacer for mitigating biofouling in seawater desalination. Water Res. Vol. 43, No. 15, pp: 3777-3786.
25
ORIGINAL_ARTICLE
مدل سازی مطلوبیت زیستگاه اردک مرمری (Marmaronetta angustirostris) با استفاده از روش حداکثر آنتروپی
شناخت نیازهای زیستگاهی گونه های حیات وحش، به خصوص گونه های در معرض خطر انقراض از اهمیت قابل توجهی در مدیریت حیات وحش برخوردار است. هدف از انجام این مطالعه مدل سازی مطلوبیت زیستگاه گونه آسیب پذیر اردک مرمری (Marmaronetta angustirostris) در بخش شمالی تالاب بین المللی شادگان بود. نقاط حضور گونه با انجام مطالعات میدانی و گزارشات جوامع محلی و کارشناسان سازمان محیط زیست به دست آمد. عوامل محیطی به کاربرده شده به عنوان متغیرهای مؤثر بر حضورگونه شامل عمق آب، دمای آب، هدایت الکتریکی، اسیدیته، میزان اکسیژن محلول، تیپ پوشش گیاهی، شاخص تراکم پوشش گیاهی و فاصله از روستا بود. سپس متغیرهای مورد نیاز برای مدل سازی با استفاده از سامانه اطلاعات جغرافیایی تهیه و در نهایت برای تهیه نقشه مطلوبیت زیستگاهی از مدل حداکثر آنتروپی (MaxEnt) استفاده شد. نتایج نشان داد که مدل مکسنت در این مطالعه عملکرد خوبی دارد و سطح زیر منحنی (0/981=AUC) محاسبه گردید. هم چنین به ترتیب متغیرهای هدایت الکتریکی، میزان اکسیژن محلول، فاصله از روستا و مراکز حضور انسان، پوشش گیاهی نیزار و جگن و سپس عمق آب مهم ترین متغیرهای محیطی مؤثر بر مطلوبیت زیستگاهی این گونه شناسایی شدند.
http://www.aejournal.ir/article_68611_0b7e9863b578c7d018a58fda76906838.pdf
2018-06-22
57
64
اردک مرمری
حداکثرآنتروپی
مدل مطلوبیت زیستگاه
تالاب بین المللی شادگان
زهرا
شریبی
z.shoreybi@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر
AUTHOR
اولیا قلی
خلیل پور
okhalilipour@ut.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر
LEAD_AUTHOR
حسین
محمد عسگری
h.masgari@kmsu.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی دریا، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر
AUTHOR
اداره کل حفاظت محیط زیست خوزستان. 1377. مطالعه لیمنوژیک و حفظ تعادل اکولوژیک آب های داخلی (تالاب شادگان) فاز مقدماتی. گزارش شماره 2.
1
بهادری خسروشاهی، ف.؛ علیزاده شعبانی، ا.؛ کابلی، م.؛ کرمی، م.؛عطارد، پ. و شریعتی، م.، 1389. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه کمرکلی (Sitta europaea) در نیمرخ شمالی البرز. نشریه محیط زیست طبیعی. شماره 3، صفحه 225 تا 236.
2
بهداروند، ن.؛ کابلی، م.؛ جباریان امیری، ب.؛ ابراهیم پور، ر.؛ اسدی آقبلانی، م. و ایمانی هرسینی، ج.،1393. شناسایی مناطق پر خطر و عوامل محیطی موثر برحملات گرگ به دام در استان همدان با به کارگیری روش مدل سازی MAXENT. مجله محیط زیست طبیعی. شماره 3، صفحات 245 تا 252.
3
تک تهرانی، ع.؛ شمس اسفندآباد، ب.؛ کرمی، م. و فرهادی نیا، م.ص.،1394. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه شاه روباه (Vulpescana) مبتنی بر فناوری دوربین های تله ای در ایران. محیط زیست جانوری. شماره 3، صفحات 39 تا 46.
4
شیخی ئیلانلو، ص.؛ معین الدینی، م.؛ قلی پور، م.؛ شیخی، ع. و کراچی، ه.،1395. ارزیابی زیستگاه کوکر شکم سیاه (Pterocles orientallis) با روش آنتروپی بیشینه در پناهگاه حیات وحش شیر احمد سبزوار. مجله محیط زیست جانوری. شماره 1، صفحه 231 تا 245.
5
کرمی، پ.؛ حسینی، م. و کمانگر، م.، 1394. مدل سازی ریسک حملات مکانی تابستانه و پاییزه گرگ (Canis lupus) به آهو ایرانی (Gazella subgutturosa) در منطقه تیر اندازی و شکار ممنوع قراویز (استان کرمانشاه). محیط زیست جانوری. شماره 4، صفحات 11 تا 20.
6
کریمی، س.؛ وارسته مرادی، ح.؛ رضایی، ح. و قدیمی، م.، 1391. مدل سازی زیستگاه برای دارکوب سیاه و خالدار بزرگ با استفاده از رگرسیون منطقی. دو فصلنامه پژوهش های محیط زیست. شماره 5، صفحه 47.
7
کفاش، ا.؛ کابلی، م. و گونتا، ک.، 1393. پیشبینی اثر تغییر اقلیمی بر سوسمار دم تیغی بین النهرین (saara loricata) با استفاده از مدل حداکثرآنتروپی (MAXENT) و بایوکلایم (BIOCIM). مجله محیط زیست جانوری. شماره 1، صفحات 5 تا 82.
8
کفاش، ا.؛ کابلی، م. و گونتا، ک.، 1394. بررسی مقایسه ای اثر تغییر اقلیم بر خزندگان مناطق بیابانی و کوهستانی ایران، مطالعه موردی (سوسمار دم تیغی بین النهرین saara locata و آگامای قفقازی Paralaudakia caucasia). مجله محیط زیست جانوری. شماره 3، صفحات 103تا 108.
9
مشتاقی، م.؛ کابلی، م. و شمسایی، م.، 1392. تعیین شاخص مطلوبیت زیستگاه (HSI) رودخانه ای اردک سرسبز (Anas platyrhynchos) در رودخانه زاینده رود. فصلنامه اکو بیولوژی تالاب. شماره 18. صفحه 13 تا 22.
10
منصوری، ج.، 1387. راهنمای صحرایی پرندگان ایران. انشارات فرزانه.
11
میرزایی، ر.؛ همامی، م.رو؛ اسماعیلی ساری، ع. و رضایی، ح.، 1392. مدل سازی پراکنش دلیجه کوچک (falco naumanni) در استان گلستان. پژوهش های محیط زیست. شماره 8، صفحه 149تا 156.
12
ALAbed, A.S.; Mudhafar, S. and Lujani Ibraheem, H., 2017. Distribution of the Marbled Teal Marmaronetta angustirostris over different habitat in Al Delmej Wetland Iraq. Advance Research Journal of Multi Disciplinary Discoveries. Vol. 11, pp: 10-13.
13
Baldassarre, G.A. and Bolen, E.G., 2006. Waterfowl Ecology and Management. John Wiley and Sons, New York Publisher, Krieger Publishing Company. 567 p.
14
Batt, B.D.J.; Afton, A.D.; Anderson, M.G.; Ankney, C.D.; Jonson, D.H.; Kadlec, J.A. and Krapu, G.L., 1992. Ecology and Management of Breeding Waterfowl. University of Minnesota Press, Minneapolis and London.
15
Behrouzi Rad, B., 2009. Waterbird Populations during Dry and Wet Years in the Hamoun Wetlands Complex, Iran/Afghanistan Border. Podoces. Vol. 4, No. 2, pp: 88-99.
16
Benito, B.M.; Martnez Ortega, M.M.; Munoz, L.M.; Lorite, J. and Pears, J., 2009. Assessing extinction-risk of endangered plants using species distribution models: a case study of habitat depletion caused by the spread of greenhouses. Biodiversity and Conservation. Vol. 62, No. 9, pp: 2209-2220.
17
Elith, J.; Graham, C.H.; Anderson, R.P.; Dudik, M.; Ferrier, S.; Guisan, A.; Hijmans, R.J.; Huettmann, F.; Leathwick, J.R.; Lehmann, A.; Li, J.; Lohmann, L.G.; Loiselle, B.A.; Manion, G.; Moritz, C.; Nakamura, M.; Nakazawa, Y.; Overton, J.M.; Peterson, A.T.; Phillips, S.J.; Richardson, K.; Scachetti Pereira, R.; Schapire, R.E.; Soberon, J.; Williams, S.; Wisz, M.S. and Zimmermann, N.E., 2006. Novel methods improve prediction of species’distributions from occurrence data. Ecography. Vol. 29, pp: 129-151.
18
Engler, R.; Guisan, A. and Rechsteiner, L., 2004. An improved approach for predicting the distribution of rare and endangered species from occurrence and pseudoabsence data. Journal of Applied Ecology. Vol. 4, pp: 263- 274.
19
Elmberg, J.; Nummi, P.; Poysa, H. and Sjoberg, K., 1993. Factors affecting species number and density of dabbling duck guilds in North Europe. Ecography. Vol. 16, pp: 251-260.
20
Esther, S.G.; Cristina, F.; Jose, L.E. and Andy, j.G., 2012. Habitat selection of Marbled Teal and White-headed Duck during the breeding and wintering season in southeastern Spain.
21
Fielding, A.H. and Bell, J.F., 1997. A review of methods for the assessment of prediction errors in conservation presence/absence models. Environmental Conservation. Vol. 24, pp: 38-49.
22
Green, A.J., 1993.The status and conservation of the Marbled Teal (Marmaronetta angustirostris). Slimbridge U.K. Wetlands International, IWRB Spec. Publ. 23, 108 p.
23
Groombridge, B., 1993. 1994 IUCN Red List of threatened animals. Gland, Switzerland, and Cambridge, U.K.: International Union for Conservation of Nature and Natural Resources.
24
Green, A.J., 1998. Comparative feeding behavior and niche organization in a Mediterranean duck community. Canadian Journal of Zoology. Vol. 76, pp: 500-507.
25
Green, A.J., 2000. The habitat requirements of the Marbled Teal (Marmaronetta angustirostris), Me´ne´tr., a review. In: Comı´n, F.A., Herrera, J.A., Ramı´rez, J. (Eds.) Limnology and aquatic birds monitoring, modelling and management. Proceedings of theSecond International Symposium on Limnology and Aquatic Birds. Universidad Auto´noma de Yucata´n, Me´rida. pp: 147-163.
26
Gonzales, S.E.; Fuentes, C.; Ferrandez, M.; Jose, L.E. and Green, A.J., 2013. Habitat selection of Marbled Teal and White-headed Duck during the breeding and wintering seasons in south eastern Spain. Bird Conservation International. Vol. 23, No. 3, pp: 344-359.
27
Hammer, H., 2012. Paleontological Statistics, Version 2104, Natural History Museum, University of Oslo. 411 p.
28
Hattori, A. and Mae, S., 2001. Habitat Use and Diversity of Waterbirds in a Coastal Lagoon Biwa. Journal of Ecological Research. Vol. 16, No. 3, pp: 122-112.
29
Hengel, T.; Sierdsema, H. and Radvic, A., 2009. Spatial prediction of species distributions from occurrence only record: combining point pattern analysis, ENFA and regression-kriging. Ecological Modeling, Vol. 220, No. 24, pp: 3499-3511.
30
Hernandez, P.A.; Graham, C.H.; Master, L.L. andAlbert, D.L., 2016. The effect of sample size and species characteristics on performance of different species distribution modeling methods. Ecography. Vol. 29, No. 2, pp: 339-322.
31
Hoyer, M.V. and Canfield, D.E., 1994. Bird abundance and species richness on Florida Lake: influence of trophic status, lake morphology, and aquatic macrophytes. Volume 279, No. 1, pp: 107-119.
32
Ortega Huerta, M.A. and Peterson, A.T., 2118. Modeling ecological niches and predicting geographic distributions: a test of six presences only methods. Revista mexicana de Biodiversidad. Vol. 75, No. 6, pp: 205-216.
33
Peterson, A.T.; Lash, R.R.; Carroll, D.S. and Johnson, K.M., 2006. Geographic potential for outbreaks of Marburg hemorrhagic fever. American Journal of Tropical Medicine and Hygiene. Vol. 75, No. 1, pp: 9-15.
34
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological Modelling. Vol. 190, pp: 231-259.
35
Pillisson, J.M.; Reeber, S. and Marion, L., 2002. Bird Assemblages as Bio-indicators of Water Regime Management and Hunting Disturbance in Natural Wet Grasslands. Journal of Biologic Conservation. Vol. 106, pp: 115-127.
36
Suter, W., 1994. Overwintering waterfowl on Swiss lake: how are abundance and species richness influenced by trophic status and lake morphology? Hydrobiologia. Vol. 279, No. 1, pp: 1-14.
37
Titeux, N.; Dufrene, M.; Radoux, J.; Hirzel, A. and Defourny, P., 2001. Fitness-related parameters improve presence only distribution modelling for conservation practice: The case study of the red-backed shrike. Biological Conservation. Vol. 138, pp: 207-223.
38
Vetaas, O.R., 2002. Realized and potential climate niches: a comparison of four Rhododendron tree species. J. Biogeogr. Vol.29, pp: 545-554.
39
Wisz, M.S.; Hijmans, R.J.; Li, J.; Peterson, A.T.; Graham, C.H. and Guisan, A., 2008. Effects of sample size on the performance of species distribution models. Diversity and Distributions. Vol. 14, No. 5, pp: 763-773.
40
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی فون پرندگان منطقه شکار ممنوع تالاب میقان اراک
منطقه شکار ممنوع تالاب میقان اراک در مرکز کشور ایران و در دالان مهاجرتی پرندگان قرار دارد. این منطقه در فصل سرما با داشتن شرایط مطلوب زیستگاهی هر ساله پذیرای تعداد زیادی پرنده مهاجر به ویژه درنای معمولی می باشد، برای مشاهده فون پرندگان منطقه 4 ایستگاه که دارای شرایط زیستگاهی متنوع اعم از آبی، کنار آبی، بیابانی کویری و درختچه ای می باشند. به عنوان محل های مشاهده انتخاب شدند. مشاهده پرندگان طی چهار فصل سال از بهار 1392 لغایت زمستان 1394 انجام گرفت. جهت جمع آوری داده ها از روش مشاهده و شمارش پرندگان به صورت مستقیم صورت گرفت. در طول مطالعه 150 گونه پرنده از 13 راسته و 38 تیره شناسایی شد که از این تعداد 77 گونه آبزی و کنارآبزی و 73 خشکی زی مشاهده شد. از تعداد گونه های مشاهده شده 60 گونه بومی، 90 گونه مهاجر و نیمه مهاجر و مهاجر عبوری بود. راسته گنجشک سانان (passeriformes) با بیش ترین تعداد تیره (12 تیره) و تعداد گونه (41 گونه) متنوع ترین راسته شناسایی شده در منطقه بود. براساس داده های حضور گونه های عقاب صحرایی، اردک سرسفید و بالابان در رده در معرض خطر انقراض می باشند.
http://www.aejournal.ir/article_68802_a99ef94393c12087d63403fe77a71a42.pdf
2018-06-22
65
72
فون پرندگان
تالاب میقان
درنای معمولی
غاز پیشانی سفید
امیر
انصاری
a_ansari645@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه اراک
LEAD_AUTHOR
محمود
کلنگری
mahmoodkolnegari@yahoo.com
2
موسسه آوای درنای خاکستری
AUTHOR
زهرا
فرجی
z.faraji7292@gmail.com
3
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه اراک
AUTHOR
Ansari, A.; Sadough, M.B. and Esfandabad, B.S., 2008. Ecological investigation of the Common Crane (Grus grus) in Meyghan wetland, Markazi province, central Iran. Journal of Podoces. Vol. 3, No. 1-2, pp: 73-78.
1
Ansari, A., 2015. Habitat suitability modeling for Common Crane (Grus grus) in Meighan Wetland of Arak. Journal of Wetland Ecobiology. azad University of Ahvaz. Vol. 7, No. 24, pp: 70-57.
2
Ashoori, A., 2013. Study of diversity and density waterbird international wetland of Yekashahr Kulab and Sefidrood estuary to compare with the Ramsar Convention criteria. Journal of Wetland Ecobiology. azad University of Ahvaz. Vol. 5, No. 15, pp: 53-62.
3
Baldassarre, G.A. and Bolen, E.G., 2006. Waterfowl Ecology and Management. John Wiley and Sons, New York. Publisher, Krieger Publishing Company. 567 p.
4
Behrouzi Rad, B., 2008. Iranian Wetlands. National geography organization of Iran publisher. First publish. 798 p.
5
Behrouzi Rad, B. and Hasan Zadeh Kiyabi, B., 2008. Identification and seasonal Comparison of Diversity and Abundance of Waterbirds of Kolahi and Tiab Wetlands at Tangeh Hormoz. Journal of Environmental Science. Vol. 5, No. 5, pp: 113-126.
6
Behrozi Rad, B.; Shariat Zade, M.A. and Hamidian, N., 1998. Study to identify (Fauna) Birds of Central Province. Journal of Environmental Studies. 26 p.
7
Elembergi, P.N.; Poeysae, H. and Sjoeberg, K., 1994. Relationship between species number, lake size and resource diversity in assemblages of breeding water. J. Biol. Vol. 21, pp: 75-84.
8
Guareschi, S.; Abellán, P.; Laini, A.; Green, A.J.; Sánchez-Zapata, J.A.; Velasco, J. and Millán, A., 2011. Cross taxon congruence in wetlands: Assessing the value of water birds as surrogates of macro invertebrate biodiversity in Mediterranean Ramsar sites. Ecological Indicators. Vol. 49, pp: 204-215.
9
Hosseni, G.; Ansari, A.; Haji Husseni, M. and Solimani, A.; 2012. Study the abundance and diversity of waterfowl and waders in four important wetland of central provinces in 1390. Third National Conference on combating desertification and sustainable development of wetlands desert. Arak Islamic Azad University.
10
Jin-Han, K., 2003. Wintering Waterbird Monitoring in the Republic of Korea. First Meeting of AWC Coordinators. Waterbird Monitoring in South Korea DOC 13.
11
Mansouri, J., 2008. Field guide of Birds of Iran, Tehran First Edition. Publications book of Farzaneh. Tehran. 513 p.
12
Perez-Arteaga, A. and Gaston, K.J., 2004. Wildfowl population trends in Mexico, 1961-2000: a basis for conservation planning. Biological Conservation. Vol. 115, pp: 343-355.
13
Porter, R.F.; Christensen, S. and Schiermacker Hansen, P., 1996. A field guide to the birds of the Middle East. T and AD Poyser, London.
14
Sadough, M.B. and Ansari, A., 2007. Introducing Mighan wetlands as a Ramsar site and Important Bird Area(IBA). The Environment Scientific Quarterly Journal.
15
Scott, D.A. and Adhami, A., 2006. An updated checklist of the birds of Iran. Podoces 1:1-16. Torres, R., 1995. Waterfowl community structure of lagunsanto Domingo (Cordoba) during an annual cycle. Rev. ASOC.SCI.hitor.st.Tome. Vol. 26, No. 1, pp: 33-40.
16
Stolen, E.D.; Breininger, D.R. and Frederick, P.C., 2005. Using waterbirds as indicators in estuarine systems: successes and perils. Estuarine Indicators, CRC Marine Science Series, Edited by Bortone, S. A., Raton, B., London New York Washington D.C.
17
Tabie, O. and Ebrahimi, N., 2013. Determination of Status of Wintering Waterbirds Spices Diversity at Meyghan Wetland in Markazi Province. Experimental Animal Biology. Vol. 2, No. 6, pp: 33-22.
18
Tabie, O. and Varastiy, A., 2011. Study biodiversity of birds wintering of waterfowl and waders Khor-Khargi of Province Hormozgan. Journal of Wetland Ecobiology. Vol. 2, No. 7, pp: 35-45.
19
Tohidifar, M.; Salmanzadeh, R.; Baniasady, S. and Imani Harsini, J., 2010. Status of Armenian Gull Larus armenicus in Iran with introducing its newest breeding habitat in Meyghan wetland, Markazi province. Journal of Natural Environmental, Iranian Journal of Natural Resources. Vol. 63, No. 3, pp: 237-247.
20
Zanganeh, M.K., 2002. Survey of food effects on population dynamic of birds in Bamdej wetland in wet seasons. MSc thesis, Environmental Science, Islamic Azad University, Ahwaz Branch. Iran.
21
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثرات جابه جایی درون گله ای خروس ها بر توان باروری گله های مادر گوشتی از دیدگاه اقتصادی
درگله های مادر گوشتی اغلب با افزایش سن از هفته 40 تا 45 ، میزان باروری کاهش می یابد، لذابرای جبران کاهش باروری ناشی از افزایش سن خروس از تکنیک های مختلفی استفاده می شود که مهم ترین آن جابجایی درون گله ای خروس ها یا اینتراسپایکینگ است. برخلاف اسپایکینگ که همواره خطر ریسک و آلودگی از انواع مختلف از یک فارم دیگر به داخل گله وجود دارد در این روش جابجایی خروس ها در درون گله هیچ نگرانی از نظر ورود آلودگی به داخل فارم وجود ندارد که یکی از مهم ترین امتیازات این روش می باشد. در این تحقیق برای برآورد جریان نقدینگی از اطلاعات درآمدی و هزینه ای مربوط به سال های 1395 و 1396مجتمع تولید جوجه یک روزه گوشتی آرتا جوجه استان اردبیل استفاده گردید. با استفاده از مدل زیست اقتصادی طراحی شده و اطلاعات جمع آوری شده از مزرعه پرورش مرغ مادر گوشتی، برآورد ارزش اقتصادی جوجه یک روزه و نرخ زنده مانی خروس های گله در حالت های مختلف جابجایی درون گله ای تعیین گردید. ارزش اقتصادی یک صفت به صورت افزایش در سود به دست آمده از یک حیوان وقتی عملکرد حیوانات برای صفت مورد نظر یک واحد افزایش یابد تعریف می گردد. این در حالی است که عملکرد برای سایر صفات ثابت باقی بماند. انواع روش های جابجایی درون گله ای خروس ها مشخص نمود که بیش ترین درصد هچ و میزان درآمد در حالت 32 درصد جابجایی و کم ترین هچ و درآمد در حالت 44 درصد جابجایی حاصل شد. به طوری که انجام 32 درصد جابجایی درون گله ای خروس ها با رعایت سایر موارد مدیریتی دارای بیش ترین سود و بالاترین ارزش اقتصادی تولید جوجه یک روزه گوشتی و نیز بیش ترین نرخ زنده مانی خروس (تلفات کم تر) می باشد. نتایج این تحقیق نشان داد که استفاده از روش های جابجایی درون گله ای خروس ها با توجه به شرایط گله های مرغ مادر گوشتی، جهت حفظ و جبران افت باروری ناشی از افزایش سن خروس در گله ها و نیز در جهت بهبود برون ده اقتصادی سیستم تولید جوجه یک روزه گوشتی بسیار مفید و موثر است.
http://www.aejournal.ir/article_68804_34ccfa028c72fce8f6465badfeb56cb6.pdf
2018-06-22
73
78
جابجایی درون گله ای خروس
جوجه یک روزه گوشتی
زنده مانی خروس
ارزش اقتصادی
رضا
سید شریفی
reza_seyedsharifi@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
LEAD_AUTHOR
داور
مهدوی
mahdavidavar59@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
نعمت
هدایت ایوریق
hedayatuma@gmail.com
3
گروه علوم دامی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
جمال
سیف دواتی
jseifdavati@yahoo.com
4
گروه علوم دامی، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران
AUTHOR
محمود
صحرایی
m.sahraei2009@gmail.com
5
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان اردبیل (مغان)، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اردبیل، ایران
AUTHOR
مددی، م.؛ یوسفی کلاریکلایی، ک. و شجاعی، ح.، 1393. بررسی تاثیر خصوصیات فیزیکی خروس ها بر عملکرد تولیدمثلی گله های مرغ مادر گوشتی. نشریه علوم درمانگاهی ودامپزشکی ایران. دوره 8، شماره 1، صفحات 19 تا 26.
1
مصلحی، ح،ر.، 1386.اصول پرورش مرغ مادر. انتشارات موسسه آموزش عالی علمی کاربردی جهاد کشاورزی.284 صفحه.
2
Bramwell, R.K.; McDaniel, C.D.; Wilson, C.D. and Howarth, B., 1996. Age effects on male and female broiler breeders on sperm penetration of the perivite lline layer overlying the germinal disc. Poultry Sci. Vol. 75, pp: 755-762.
3
Carvalho, E.; Zilli, J.; Mendes, A.; Morello, G. and Bonamigo, D., 2015. Main Factors that Affect the Economic Efficiency of Broiler Breeder Production. Brazilian Journal of Poultry Science. Vol. 17, No. 1, pp: 11-16.
4
Hofacre, C., 2002. Management techniques to improve male mating activity and compensate for the age-related decline in broiler breeder fertility: intra-spiking. This article appeared in the Cobb-V. T, News. Vol. 7, No. 1, pp: 2000.
5
Jiang, X.; Groen, A.F. and Brascamp, E.W., 1998. Economic Values in Broiler Breeding. Poultry Sci. Vol. 77, pp: 934-943.
6
Karianne, M. and Chung, Y., 2010. Effect of double interspiking on fertility, behavior, and blood parameters in broiler breeder males reared under heat stress conditions. Master's Thesis, University of Tennessee. 694 p.
7
McGary, S.I.; Estevez, M.R.; Bakst, T. and Pollock, D.L., 2002. Physiology and Reproduction Phenotypic Traits as Reliable Indicators of Fertility in Male Broiler Breeders. Poultry Sci. Vol. 81, pp: 102-111.
8
Petitte, J.N.; Hawes, R.O. and Gerry, R.W., 1982. The influence of flock uniformity on the reproductive performance of broiler breeder hens housed in cages and floor pens. Poultry Sci. Vol. 61, pp: 2166-2171.
9
Vegi, B.; Szike, Z.S. and Barna, J., 2004. Monitoring of the effects of various spiking techniques in broiler breeder flocks by counting of IPVL holes of the eggs. Research Institute for Animal Breeding and Nutrition. 200 p.
10
Wood, B.J., 2009. Calculating economic values for turkeys using a deterministic production model. Canadian Journal of Animal Sci. Vol. 89, pp: 201-213.
11
Wilson, H.R.; Piesco, N.P.; Miller, E.R. and Nesbeth, W.G., 1979. Prediction of the fertility potential of broiler breeder males. World’s Poultry Sci. Vol. 35, pp: 95-118.
12
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات آنزیم فیتاز و سطوح مختلف فرمالدهید در جیره بر عملکرد رشد، خصوصیات لاشه، سیستم ایمنی و فراسنجه های خونی جوجه های گوشتی
این تحقیقبه منظور بررسی اثر افزودن سطوح مختلف فرمالدهید به خوراک جوجه های گوشتی با و بدون آنزیم فیتاز بر عملکرد رشد، لاشه و فراسنجه های ایمنی انجام شد. آزمایش با آرایش فاکتوریل 3×2 شامل سه مقدار فرمالدهید 37% به عنوان منبع فرمالدهید (0، 2 و 6 میلی لیتر در هر کیلوگرم) و دو سطح با و بدون استفاده از آنزیم فیتاز در جیره ها انجام شد. از تعداد 360 قطعه جوجه یک روزه خروس راس 308 در 6 تیمار با 4 تکرار استفاده شد. نتایج این آزمایش نشان داد که اثرات متقابل و هم چنین اثر فیتاز بر میانگین مصرف خوراک در دوره آغازین معنی دار بود (0/05>p). نتایج عملکرد رشد نشان داد که اثرات متقابل تیمارها تاثیر معنی داری بر افزایش وزن جوجه های گوشتی در دوره های رشد، پایانی و کل دوره داشت(0/05>p). هم چنین افزایش وزن جوجه ها تحت تاثیر استفاده از فیتاز در جیره قرار گرفت (0/05>p). در همین راستا نتایج نشان داد که افزودن فرمالدهید به جیره ها سبب تغییرات معنی داری در صفت افزایش وزن در دوره رشد شد (0/05>p). نتایج ارزیابی درصد اندام های داخلی نشان دهنده تاثیر معنی دار اثرات متقابل تیمارها و افزودن فیتاز بر درصد چربی محوطه احشایی بود (0/05>p). نتایج این آزمایش نشان دهنده تاثیر معنی دار اثرات متقابل و استفاده از فیتاز بر آنزیم کبدی آسپارتات آمینوترانسفراز (AST) بود (0/05>p). نتیجه گیری کلی این آزمایش نشان دهنده بهبود افزایش وزن در نتیجه استفاده از فیتاز و عدم تاثیر منفی استفاده از فرمالدهید بر عملکرد رشد جوجه های گوشتی بود.
http://www.aejournal.ir/article_69115_56223a0638c51dc5ee15f060c282e69f.pdf
2018-06-22
79
86
فرمالدهید
فیتاز
جوجه گوشتی
رشد
سیتم ایمنی
وحید
رضایی پور
vrezaeipour@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد قائم شهر، قائم شهر، ایران
LEAD_AUTHOR
علی
زرینه
ali.zarrineh@yahoo.com
2
گروه علوم دامی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد قائم شهر، قائم شهر، ایران
AUTHOR
صفیه
وطن دور
svatandour@gmail.com
3
گروه علوم دامی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد قائم شهر، قائم شهر، ایران
AUTHOR
Anwar, M.I.; Khan, M.Z.; Muhammad, G.; Bachaya, A. and Babar, A.M., 2001. Effects of dietary formalin on the health and testicular pathology of male Japanese quails (Coturnix coturnix japonica). Veterinary and Human Toxicology. Vol. 43, pp: 330-333.
1
Babar, A.M.; Khan, M.Z.; Shabbir, A.; Khan, A.; Bachaya, H.A. and Anwar, M.I., 2001. Toxico-pathological effects of formalin (37% formaldehyde) feeding in broiler chicks. Pakistan Veterinary Journal. Vol. 21, pp:13-16.
2
Bedford, M.R. and Partridge, G.G., 2010. Enzymes in farm animal nutrition, 2nd Edition. CAB International. UK. 163 p.
3
Dos Santos, T.T.; Gomes, G.A.; Walk, C.L.; Freitas, B.V. and Araujo, L.F., 2013. Effect of formaldehyde inclusion on phytase efficiency in broilers. Journal of Applied Poultry Research. Vol. 22, pp: 204-210.
4
Hassanabadi, A.; Nasiri Moghadam, H.; Kermanshahi, H. and Daneh Mesgaran, M., 2009. The effect of microbial phytase on apparent digestibility of crude protein, amino acids, minerals and performance of female broiler chickens. Iranian Journal of Animal Science Research. Vol. 2, pp: 9-18.
5
Javed, M.T.; Sarvar, M.A.; Kausar, A. and Ahmad, I., 2002. Effects of feeding different levels of formalin
6
(37% formaldehyde) and urea on broiler health and performance. Veterinary Archives. Vol.72, pp: 285-302.
7
Karimi torshizi, M.A.; Rahimi, S. and Mirsalimi, S.M., 2002. Effects of late microbial phytase supplementation on broiler chickens. Journal of Veterinary and Medicine. Vol. 3, pp: 75-79.
8
Khan, A.; Hussain, M. and Khan, M.Z., 2006. Effects of formalin feeding or administering into the crops of white leghorn cockerels on hematological and biochemical parameters. Poultry Science. Vol. 85, pp: 1513-1519.
9
Khan, A.; Bachaya, H.A.; Khan, M.Z. and Mahmood, F.,2005. Pathological effects of formalin (37% formaldehyde) feeding in female Japanese quails (Coturnix coturnix japonica.) Human Experimental Toxicology. Vol. 24, pp: 415-422.
10
Mousavi, A.; Rezaei, M.; Niknafs, F. and Shohreh, B., 2010. Effects of microbial phytase on performance, carcass characteristics and phosphorous and calcium contents of tibia in broiler chicks. Research Animal Production. Vol. 1, pp: 16-28.
11
Qadyanloo, B.; Rahimi, S. and Karimi Torshizi, M.A., 2009. Effect of organic acids and formaldehyde on morphology of broiler intestine and salmonella reduction in feed. Journal of Veterinary Research. Vol. 63, pp: 215-220.
12
Ravindran, V.; Selle, P.H.; Ravindran, G.; Morel, P.C.H.; Kies, A.K. and Bryden, W.L., 2001. Microbial phytase improves performance, metabolizable energy and ileal amino acid digestibility of broilers fed a lysine-deficient diet. Poultry Science. Vol. 80, pp: 338-344.
13
Rezaeipour, V.; Barsalani, A. and Abddullahpour, R., 2016. Effects of phytase supplementation on growth performance, jejunum morphology, liver health, and serum metabolites of Japanese quails fed sesame (Sesamum indicum) meal-based diets containing graded levels of protein. Tropical Animal Health and Production. Vol. 48,
14
pp: 1141-1146.
15
Selle, P.H.; Ravindran, V.; Caldwell, R.A. and Bryden, W.L., 2000. Phytate and phytase: consequences for protein utilization. Nutrition Research Review. Vol. 13, pp: 255-278.
16
Sheehan, N., 2010. Analysis of enzymes, principles and problems: Developments in enzyme analysis 2nd ed. CABI, Wallingford, UK. pp: 260-272.
17
Sriperm, N.; Shirley, R.B.; Gately, S.; Freeman, M.E. and Davis, A.J., 1993. The influence of formaldehyde on carbohydrase and phytase efficacy in 21-day-old broilers. Poultry Science (Supplement). Vol. 1, pp: 86-87.
18
Viveros, A.; Centeno, C.; Brenes, A.; Canales, R. and Lozano, A., 2000. Phytase and acid phosphatase activities in plant feedstuffs. Journal of Agriculture and Food Chemistry. Vol. 48, pp: 4009-4013.
19
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تغییرات ریختشناختی (Hemorrhois ravergieri (Reptilia: Ophidia: Colubridae در ایران
Hemorrhoisravergieri ازجمله مارهای با پراکنش وسیع در ایران است. تحقیقات اخیر تمایزات ظاهری قابل توجهی را بین نمونه های موجود در زیستگاه های مختلف نشان داده است. دراین پژوهش، تفاوت های ریختی این گونه در جمعیت های مختلف مورد بررسی قرار گرفت. بدین منظور، 52 نمونه مار پلنگی شامل 30 نر، 16 ماده و 6 نابالغ از12 استان جمع آوری گردید. نتایج حاصل از تجزیه و تحلیل به مولفه اصلی نشان داد که نمونه ها در پنج گروه مختلف شامل گروه 1:خراسان و گلستان (شمال و شمال شرقی البرز)،گروه2:آذربایجان غربی، آذربایجان شرقی و زنجان (زاگرس شمالی)، گروه3:اصفهان، البرز، لرستان و خوزستان (زاگرس شمالی-میانی)، گروه4:چهارمحال و بختیاری (زاگرس مرکزی)، گروه5:کرمان و فارس (زاگرس جنوبی) قابل بررسی هستند. 7صفت متریک و5 صفت مریستیک به تفکیک جنسیت در گروه های مختلف مورد تحلیل قرار گرفت. مقایسه بین نمونه های بالغ و نابالغ، اختلاف معنی داری را در تعداد فلس شکمی (0/026=P) و زیر دمی (0/041=P)نشان داد. در مقایسه بین نرها و ماده ها، تنها دو صفت طول کل بدن و طول تنه به ترتیب با (0/034=P) و (0/012=P) اختلاف معنی داری را نشان داد. سایر مقایسات آماری بین گروه های پنج گانه نیز در این تحقیق انجام گرفت تا صفت متمایز کننده بین مناطق تعیین گردد. به طور کلی با توجه به نتایج به دست آمده، تغییرپذیری صفات مریستیک نظیر تعداد فلس شکمی و فلس دمی بین گروه های مختلف قابل مشاهده است.
http://www.aejournal.ir/article_69141_fa1c12b5b64993e958621a74c166da71.pdf
2018-06-22
87
96
ریخت سنجی
Hemorrhois ravergieri
زیستگاه
صفات متریک
مریستیک
مینو
مشتاقی
m_moshtaghie@yahoo.com
1
گروه علوم محیط زیست، دانشکده انرژی محیط زیست، دانشگاه آزاد اسلامی واحدعلوم تحقیقات تهران
AUTHOR
محمد
کابلی
mkaboli@ut.ac.ir
2
گروه محیط زیست دانشکده منابع طبیعی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران
LEAD_AUTHOR
منصور
صالحی
mmsalehi@yahoo.com
3
گروه ژنتیک و بیولوژی مولکولی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی اصفهان
AUTHOR
حجتی، و.، 1390. فیلوژنی مولکولی و مطالعه گامتوژنز در مارمولک C.caspium در شمال ایران. رساله دکترای جانوری تکوینی. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران. 140 صفحه.
1
قاضی خانلو، ا. و کمی، ح.ق.، 1392، بررسی مورفولوژی مارپلنگی در ایران. محیط زیست جانوری. سال 5، شماره 4، صفحات 57 تا 67.
2
لطیفی، م.، 1379. مارهای ایران. انتشارات سازمان محیط زیست. 478 صفحه.
3
عبدلی، ا. و نادری، م.، 1387. تنوع زیستی ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر. انتشارات آبزیان. 244 صفحه.
4
Abou-Shaara, H. and Al-Ghamdi, A., 2012. Studies on wings symmetry and honey bee races discrimination by using standard and geometric morphometrics. Biotechnology in animal husbandry. Vol. 28, No. 3, pp: 575-584.
5
Babocsay, G., 2003. Geographic variation in Echis coloratus in the Levant with the description of a new subspecies. Zoology in the Middle East. Vol. 29, No. 1, pp: 13-32.
6
Bai, Y.; Ma, L.B.; Xu, S.Q. and Wang, G.H., 2015. A geometric morphometric study of the wing shapes of Pieris rapae from the Qinling Mountains and adjacent regions: An environmental and distance-based consideration. Florida Entomologist. Vol. 98, No. 1, pp: 162-169.
7
Daniels, E.V.; Mooney, K.A. and Reed, R.D., 2012. Seasonal wing colour plasticity varies dramatically between buckeye butterfly populations in different climatic zones. Ecological Entomology. Vol. 37, No. 2, pp: 155-159.
8
Eagderi, S. and Nasri, M., 2012. A first record of the Bitterling Rhodeus amarus (Bloch, 1782) in the Iranian part of Tigris-Euphrates basin. International Research Journal of Applied and Basic Sciences. Vol. 3, No. 3, pp: 639-641.
9
Fathnia, B.; Rastegar Pouyani, N. and Rajabzadeh, M., 2011. The snake fauna of Ilam Province, southwestern Iran. Iranian J of Animal Biosystematics. Vol. 6, No. 1.
10
Fruciano, C.; Tigano, C. and Ferrito, V., 2012. Body shape variation and colour change during growth in a protogynous fish. Environ biology of fishes. Vol. 94, No. 4, pp: 615-622.
11
Gaspe, M.S.; Gurevitz, J.M.; Gürtler, R.E. and Dujardin, J.P., 2013. Origins of house reinfestation with Triatoma infestans after insecticide spraying in the Argentine Chaco using wing geometric morphometry. Infection, Genetics and Evolution. Vol. 17, pp: 93-100.
12
Gholamifard, A.; Rastegar Pouayni, N. and Esmaeili, H., 2012. Annotated checklist of reptiles of Fars Province, southern Iran. Iranian J of Animal Biosystema. Vol. 8, No. 2.
13
Gibbs, M.; Wiklund, C. and Van Dyck, H., 2011. Phenotypic plasticity in butterfly morphology in response to weather conditions during development. Journal of Zoology. Vol. 283, No. 3, pp: 162-168.
14
Glandt, D., 2009. Taschenlexikon der Amphibien und Reptilien Europas. Alle Arten von den Kanarischen Inseln bis zum Ural: Quelle & Meyer; 1. edition.
15
Grzimek, B., 2003. Grzimek's animal life encyclopedia: Reptiles: Nature.
16
Guill, J.; Hood, C. and Heins, D., 2003. Body shape variation within and among three species of darters (Perciformes: Percidae). Ecology of Freshwater Fish. Vol. 12, No. 2, pp: 134-140.
17
Holtmeier, C.L., 2001. Heterochrony, maternal effects, and phenotypic variation among sympatric pupfishes. Evolution. Vol. 55, No. 2, pp: 330-338.
18
Ibáñez, S.; Vidal, M.A.; Ortiz, J.C. and Torres Pérez, F., 2015. Geometric morphometric analysis of the head of Microlophus atacamensis (Tropiduridae) in a latitudinal gradient. Zoological Studies. Vol. 54, No. 1, pp: 1-8.
19
Karakousis, Y.; Triantaphyllidis, C. and Economidis, P., 1991. Morphological variability among seven populations of brown trout, Salmo trutta L. in Greece. Journal of fish Biology. Vol. 38, No. 6, pp: 807-817.
20
Klingenberg, C.P., 2011. MorphoJ: an integrated software package for geometric morphometrics. Molecular ecology resources. Vol. 11, No. 2, pp: 353-357.
21
Langerhans, R.B. and DeWitt, T.J., 2004. Shared and unique features of evolutionary diversification. The American Naturalist. Vol. 164, No. 3, pp: 335-349.
22
Mitteroecker,P.andBookstein,F.,2011. Linear discrimination, ordination, and the visualization of selection gradients in modern morphometrics. Evolutionary Biology. Vol. 38, No. 1, pp: 100-114.
23
Moradi, N.; Rastegar-Pouyani, N. and Rastegar-Pouyani, E., 2014. Geographic variation in the morphology of Macrovipera lebetina (Linnaeus, 1758)(Ophidia: Viperidae) in Iran. Acta Herpetologica. Vol. 9, No. 2, pp: 187-202.
24
Nicieza, A., 1995. Morphological variation between geographically disjunct populations of Atlantic salmon: the effects of ontogeny and habitat shift. Functional Ecology. pp: 448-456.
25
Otaki, J.M.; Hiyama, A.; Iwata, M. and Kudo, T., 2010. Phenotypic plasticity in the range-margin population of the lycaenid butterfly Zizeeria maha. BMC evolutionary biology. Vol. 10, No. 1, pp: 252.
26
Rajabizadeh, M.; Nagy, Z.T.; Adriaens, D.; Avci, A.; Masroor, R.; Schmidtler, J.; Nazarov, R.; Esmaeili, H.R. and Christiaens, J., 2015. Alpine Himalayan orogeny drove correlated morphological, molecular, and ecological diversification in the Persian dwarf snake (Squamata: Serpentes: Eirenis persicus). Zoological Journal of the Linnean Society. Vol. 176, No. 4, pp: 878-913.
27
Rastegar-Pouyani, N.; Kami, H.G.; Rajabzadeh, H.; Shafiei, S. and Anderson, S.C., 2008. Annotated checklist of amphibians and reptiles of Iran. Iranian Journal of Animal Biosystematics. Vol. 4, No. 1, pp: 7-30.
28
Richtsmeier, J.T.; Burke Deleon, V. and Lele, S.R., 2002. The promise of geometric morphometrics. American Journal of Physical Anthropology. Vol. 119, No. 35, pp: 63-91.
29
Schätti, B. and Agasian, A., 1985. Ein neues Konzept für den" Coluber ravergieri C. nummifer" Komplex (Reptilia, Serpentes, Colubridae).
30
Schoville, S.D.; Widmer, I.; Deschamps-Cottin, M. and Manel, S., 2013. Morphological clines and weak drift along an urbanization gradient in the butterfly, Pieris rapae. PloS one. Vol. 8, No. 12. e83095.
31
Storey, J.D. and Tibshirani,R.,2003. Statistical significance for genomewide studies. Proceedings of the National Academy of Sciences. Vol. 100, No. 16, pp: 9440-9445.
32
Tuniyev, B.S.; Atayev, C.A. and Shammakov, S.M., 1997. On the distribution of Coluber ravergieri and Coluber nummifer in Turkmenistan and the possible evolutionary reasons for their polymorphism. Asiatic Herpetological Research. Vol. 7, pp: 131-136.
33
Vandewoestijne, S. and Van Dyck, H., 2011. Flight morphology along a latitudinal gradient in a butterfly: do geographic clines differ between agricultural and woodland landscapes? Ecography. Vol. 34, No. 5, pp: 876-886.
34
Webster, M. and Sheets, H.D.,2010. A practical introduction to landmark-based geometric morphometrics. Quantitative Methods in Paleobiology. Vol. 16, pp: 168-188.
35
Wootton, R., 2012. Ecology of teleost fishes: Springer Science & Business Media.
36
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی مقدماتی فون خزندگان منطقه شکار ممنوع سفیدکوه و آرسک در استان سمنان
منطقه شکار ممنوع سفیدکوه و آرسک دامغان با مساحت 666000 هکتار در شمال غربی شهر دامغان در مسیر جاده تهران ـ مشهد حدفاصل کیلومتر 20 تا 22 جاده دامغان به سمنان و در ضلع شمال این جاده واقع میباشد. این مطالعه به منظور شناسایی فون خزندگان این منطقه از فروردین ماه 1392 تا اواخر آبان ماه 1392 انجام شد. در طی مدت تحقیق 93 نمونه خزنده جمع آوری گردید و در مجموع هفده گونه از شش خانواده و سیزده جنس شناسایی شد که عبارتند از: Natrix tessellata، Macrovipera lebetina obtusa، Platyceps ventromaculatus ventromaculatus،Platyceps najadum najadum، Platyceps karelini،Eirenis collaris collaris ،Hemorrhois ravergieri، Pseudocerastes persicus، Natrix natrix persa، Telescopus fallax iberus، Tenuidactylus caspius caspius، Eremias velox velox، Eremias persica، Trapelus agilisagilis، Paralaudakia caucasia، Mesalina watsonana و Heremites aurata transcaucasica.. در این تحقیق، هیچ گونه ای از لاکپشت ها مشاهده نشد. تنوع سوسمارها در این منطقه نسبت به مارها کم تر بود. از زیرراسته مارها بیش ترین تعداد مشاهده شده مربوط به گونه Natrix tessellata با 7 نمونه و فراوانی 18 درصد و کم ترین آن مربوط به collarisEirenis collaris با 1 نمونه و فراوانی 3 درصد می باشد. از زیر راسته سوسماران بیش ترین تعداد مشاهده شده مربوط به Tenuidactylus caspius caspius با 15 نمونه و فراوانی 27 درصد و کم ترین تعداد مربوط به Heremites aurata transcaucasica با 3 نمونه و فراوانی 5 درصد می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_69227_772200418074db1db3d99734b2666607.pdf
2018-06-22
97
106
فون
منطقه شکار ممنوع
سفید کوه
آرسک
خزندگان
دامغان
داریوش
سلیمان فلاح
1
گروه زیست شناسی، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران
AUTHOR
ویدا
حجتی
vida.hojati@gmail.com
2
گروه زیست شناسی، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران
LEAD_AUTHOR
هومن
شجیعی
drshajiee@gmail.com
3
گروه زیست شناسی، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران
AUTHOR
شهرام
شرفی
shahramsharafi2003@yahoo.com
4
گروه زیست شناسی، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران
AUTHOR
رضا
بابائی سواسری
r_babaei_s@yahoo.com
5
گروه زیست شناسی، واحد دامغان، دانشگاه آزاد اسلامی، دامغان، ایران
AUTHOR
شریفه
خانی
sh.khani88@yahoo.com
6
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه گلستان، گرگان، ایران
AUTHOR
محیط زیست شهرستان دامغان، 1392. راهنمای منطقه شکار ممنوع سفید کوه و آرسک.
1
لطیفی، م.، 1379. مارهای ایران، انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. 478 صفحه.
2
رستگارپویانی، ن.؛ جوهری، م. و رستگارپویانی، ا.، 1386. راهنمای صحرایی خزندگان ایران. جلد اول. چاپ دوم. انتشارات دانشگاه رازی. 298 صفحه.
3
Anderson, S.C., 1963. Amphibians and Reptiles from Iran. California Academy of Science. Vol. 31, pp: 417-498.
4
Anderson, S.C., 1999. The Lizards of Iran. Oxford, Ohio.
5
Anderson, S.C., 1974. Preliminary key to the turtles, lizards and amphibians of Iran. Fieldiana Zoology, Chicago, USA. pp: 27- 44.
6
Areste, M.; and Cebrian, R., 2003. Snakes of the World, Sterling Publication. 256 p.
7
Bauer, A.M.; Masroor, R.; Titus-Mcquillan, J.; Heinicke, M.P.; Daza, J.D. and Jackman, T.R., 2013. A preliminary phylogeny of the Palearctic naked-toed geckos (Reptilia: Squamata: Gekkonidae) with taxonomic implications. Zootaxa. Vol. 3599, pp: 301-324.
8
Nagy, Z.T.; Schmidtler, J.F.; Joger, U. and Wink, M., 2003. Systematik der Zwergnattern (Reptilia: Colubridae: Eirenis) und verwandter Gruppen anhand von DNA-Sequenzen und morphologischen Daten. Salamandra Bonn. Vol. 39, pp: 149-168.
9
Nasrabadi, R.; Rastegar-Pouyani, N.; Rastegar-Pouyani, E. and Gharzi, A., 2017. A revised key to the lizards of Iran (Reptilia: Squamata: Lacertilia). Zootaxa. Vol. 4227, pp: 431-443.
10
Rastegar-Pouyani, N.; Kami, H.G.; Rajabzadeh, M.; Shafiei, S. and Anderson, S.C., 2008. Annotated checklist ofamphibians and reptiles of Iran. Iranian Journal of Animal Biosystematics. Vol. 4, No. 1, pp: 43-66.
11
Safaei-Mahroo, B.; Ghaffari, H.; Fahimi, H.; Broomand, S.; Yazdanian, M.; Najafi Majd, E.; Hosseinian Yousefkhani, S.S.; Rezazadeh, E.; Hosseinzadeh, M.S.; Nasrabadi, R.; Rajabizadeh, M.; Mashayekhi, M.; Motesharei, A.; Naderi, A. and Kazemi, S.M., 2015. The Herpetofauna of Iran: Checklist of Taxonomy, Distribution and Conservation Status. Asian Herpetological Research, Vol. 6, No. 4, pp: 257-290.
12
Smid, J.; Moravec, J.; Kodym, P.; Kratochvil, L.; Hosseinian Yousefkhani, S.; Rastegar-Pouyany, E. and Frynta, D., 2014. Annotated checklist and distribution of the lizards of Iran. Zootaxa. Vol. 3855, No. 1, pp: 001-097.
13
Szczerbak, N.N. and Golubev, M.L., 1996. Gecko fauna of the USSR and contiguous regions. Society for the Study of Amphibians and Reptiles, Ithaca, New York. 233 p.
14
Uetz,P. and Hosek,J., 2016. The reptile database. Accessible at http://www.reptile-database.org.
15
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه چندریختی رنگی درجمعیتهای قورباغه مردابی (Pelophylax ridibundus) در زیستگاههای شمالی و جنوبی استان خوزستان
یکی از مهم ترین اهداف زیستشناسی تکاملی، توصیف تنوع ریختی در جمعیت ها است، بررسی ریشههای این تنوع جهت تشریح روند تکامل و تغییرات گونهها ضروری است. الگوهای رنگی جزء صفات مناسب برای شناسایی زیرگونهها بهشمار میرود و از آنجایی که ریختهای متنوعی از قورباغه مردابی در طبیعت دیده میشود، مطالعه چندریختی (پلیمورفیسم) رنگی این گونه در زیستگاه های شمالی و جنوبی استان خوزستان با توجه به جدایی جغرافیایی و تفاوت میکروکلیمایی انجام شد به این منظور نمونهها از زیستگاههای فوق طی بهار و پائیز 1395-96 صید شده و جهت شناسایی انواع ریختی مورد بررسی قرار گرفتند، براساس نتایج به دست آمده 7 نوع ریخت در این گونه شناسایی شد. سپس فراوانی ریختهای مختلف، رابطه چندریختی و جنسیت نیز بررسی شد، باتوجه به نتایج، ریخت 7 نسبت به سایرین دارای بیشترین فراوانی بود، همچنین صفات چندریختی و جنسیت در قورباغه مردابی مستقل از هم گزارش شد. به علاوه بیشترین و کم ترین تنوع ریختی براساس فصل مشخص گردید.
http://www.aejournal.ir/article_69278_208adf5af302724e797d1b881ecb7aa6.pdf
2018-06-22
107
114
بیوسیستماتیک
پلیمورفیسم رنگی
قورباغهمردابی
Pelophylax ridibundus
اشرف
جزایری
jazayeriashraf@ymail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
فهیمه
صابری
fahime.saberi.1991@gmail.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
بلوچ . م. و کمی . ح.ق.، 1385. دوزیستان ایران. انتشارات دانشگاه تهران. صفحات 153 تا 155 .
1
پسرکلو، ع.؛ قارزی، ا.؛ کمی، ح.ق. و همایونی، م.، 1390. مطالعه چندریختی رنگی در قورباغه مردابی Rana ridibunda در استان گلستان. مجله زیست شناسی ایران. جلد 24، شماره 3.
2
درویش، ج.، 1389. جمعیتها، گونهها و تکامل. ویرایش جدید، مایر، ا.، انتشارات دانشگاه فردوسی مشهد. صفحات 329 تا 334.
3
کاخکی، ا. و درویش، ج.، 1394. مبانی سیستماتیک جانوری. ویرایش دوم، مایر، ا.، انتشارات دانشگاه فردوسی مشهد. 194 صفحه.
4
کیابی، ب.، 1386. جانور شناسی (2). انتشارات دانشگاه پیام نور. تهران. 145 صفحه.
5
مولوی، ف.؛ پاشایی راد، ش.؛ کمی، ح.ق. و یزدان پناهی، م.، 1392. تعیین دامنه شکار برای قورباغه مردابی، Rana ridibunda در شالیزارهای شمالی کشور. مجله مهار زیستی در گیاه پزشکی. جلد 1، شماره 2.
6
Dubey, S. and Roulin, A., 2014. Evolutionary and biomedical consequences of internal melanins. Pigment cell and melanoma research. Vol. 27, No. 3, PP: 327-338.
7
Harley, C.D.G.; Pankey, M.S.; Wares, J.P.; Grosberg, R.K. and Wonham, M.J., 2006. Color polymorphism and genetic structure in the sea star Pisaster ochraceus. The Biological Bulletin. Vol. 211, No. 3, pp: 248-262.
8
Hoffman, E.A. and Blouin, M.S., 2000. A review of colour and pattern polymorphisms in anurans. Biological Journal of the Linnean Society. Vol. 70, No. 4, pp: 633-665.
9
http:// www.Amphibian Species of the World.ir
10
Ishchenko, V.G., 2014. Ecological mechanisms determining stability of color polymorphism in the population of moor frog, Rana arvalis Nilss. Russian Journal of Herpetology. Vol. 1, No. 2, pp: 117-120.
11
Jablonski, D.; Alena, A.; Vlcek, P. and Jandzik, D., 2014. Axanthism in amphibians: A review and the first record in the widespread toad of the Bufotes viridis complex (Anura: Bufonidae). Belgian Journal of Zoology. Vol. 144, No. 2, pp: 93-101.
12
Lllls, G. and Glll, L.I., 2012. Sexual dimorphism and color polymorphism in the wallum sedge frog (Litoriao longburensis). Journal of the Herpetological Review. Vol. 43, No. 2, pp: 236-240.
13
Medina, I.; Wang, I.J.; Salazar, C. and Amézquita, A., 2013. Hybridization promotes color polymorphism in the aposematic harlequin poison frog, Oophagahistrionica. Journal of Ecology and evolution. Vol. 3, No. 13, pp: 4388-4400.
14
Mohammadi, Z.; Khajeh, A.; Ghorbani, F. and Kami, H.G., 2015. A biosystematic study of new records of the marsh frog Pelophylax ridibundus (Pallas, 1771) (Amphibia: Ranidae) from the southeast of Iran. Journal of Asia Pacific Biodiversity. Vol. 8, No. 2, PP: 178-182.
15
Moreno-Gómez, F.; Duque, T.; Fierro, L.; Arango, J.; Peckham, X. and Asencio-Santofimio, H., 2014. Histological Description of the Skin Glands of Phyllobates bicolor (Anura: Dendrobatidae) Using Three Staining Techniques. International Journal of Morphology. Vol. 2, No. 3, pp: 143-151.
16
O'neill, E.M. and Beard, K.H., 2010. Genetic basis of a color pattern polymorphism in the coqui frog Eleutherodactylus coqui. Journal of Heredity. Vol. 1, No. 6, pp: 703-709.
17
Shaffer, H.B.; Gidiş, M.; McCartney-Melstad, E.; Neal, K.M.; Oyamaguchi, H.M. and Tellez, M., 2015. Conservation genetics and genomics of amphibians and reptiles. Journal of Annu Rev AnimBiosci. Vol. 3, No. 1, pp:113-138.
18
Zhelev, Z.; Arnaudov, A. and Boyadzhiev, P., 2014. Colour polymorphism, sex ratio and age structure in the populations of Pelophylax ridibundus and Pseudepidalea viridis (Amphibia: Anura) from anthropogenically polluted biotopes in southern Bulgaria and their usage as Bioindicators. Trakia Journal of Sci. Vol. 1, No. 1, pp: 1-14.
19
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه تجمع زیستی فلزات سنگین سرب، مس، جیوه و کادمیوم در بافت عضله ماهی کفشک زبان گاوی (Cynoglossus arel)، جلبک قهوهای سارگاسوم (Sargassum illicifolium) و رسوبات سطحی سواحل شمالی دریای عمان
در مطالعهحاضر غلظت فلزات سنگین سرب، مس، کادمیوم و جیوه در بافت عضله ماهی کفشک زبان گاوی، جلبک قهوهای سارگاسوم و رسوبات سواحل شمالی دریای عمان در 5 ایستگاه نمونهبرداری بندر جاسک (استان هرمزگان)، صیدگاه درک، بندر پزم، خلیج چابهار و بندر گواتر در (استان سیستان و بلوچستان) اندازهگیری و مورد مقایسه قرار گرفت. بدین منظور در فصل بهار سال 1396 نمونهبرداری از هر ایستگاه بهطور تصادفی انجام شد. نمونهها با استفاده از روش MOOPAMهضم شده و غلظت فلزات سنگین موردنظر توسطدستگاهجذباتمی(AAS)موردسنجش قرار گرفت. میانگین غلظت فلزات سرب، مس، کادمیوم و جیوه در رسوبات ایستگاههای بندر جاسک، صیدگاه درک، بندر پزم، خلیج چابهار و بندر گواتر به ترتیب معادل 1/31، 20/99، 0/52 و 0/26 ppm؛ در بافت عضله ماهی کفشک زبان گاوی معادل 0/23، 2/77، 0/14 و 0/23 ppm و در نمونه جلبک قهوهای سارگاسوم معادل 0/10، 0/90، 0/09 و 0/09 ppm به دست آمد (0/05>p). با توجه به نتایج بهدستآمده بالاترین غلظت فلزات سرب (2/18)، مس (36/7)، کادمیوم (1/47) و جیوه (0/86) در رسوبات ایستگاه خلیج چابهار و بالاترین غلظت فلزات سرب (0/51)، مس (6/1) و کادمیوم (0/36) در بافت عضله ماهی کفشک زبان گاوی در ایستگاه بندر جاسک و بالاترین غلظت جیوه (0/57) در ایستگاه خلیج چابهار ثبت شد. هم چنین بالاترین غلظت سرب (0/23)، کادمیوم (0/31) و جیوه (0/20) در بافت جلبک قهوهای سارگاسوم نیز در ایستگاه بندر جاسک و بالاترین غلظت فلز مس (2/1) در خلیج چابهار مشاهده شد. کم ترین غلظت این فلزات نیز برای هر سه نمونه در ایستگاه صیدگاه درک ثبت شد. درمجموع نتایج مطالعه حاضر نشان داد که غلظت فلزات مورد مطالعه در این تحقیق در دو ایستگاه بندر جاسک و خلیج چابهار بالاتر از سایر نقاط بود. مقایسه نتایج بهدستآمده در خصوص میانگین غلظت این فلزات در بافت عضله ماهی کفشک زبان گاوی و بافت جلبک قهوهای سارگاسوم با مقادیر استانداردهای جهانی WHO, FDA, NHMRCو مقادیر ارائهشده توسط موسسه استاندارد ملی ایران و هم چنین نتایج به دست آمده در خصوص میانگین غلظت این فلزات در رسوبات مناطق تحت بررسی با استانداردهای جهانی NOAA، CCMEو USEPAنشان داد که سطح غلظت این فلزات سنگین (بهجز غلظت فلز مس که از سطح LAL بالاتر بود) از حد استاندارهای اشارهشده در سطح پایینتری قرار داشت.
http://www.aejournal.ir/article_69318_41609aec883d6ad4a000c81e717e27e5.pdf
2018-06-22
115
128
دریای عمان
فلزات سنگین. ایران
علی
مهدی آبکنار
aliabkenar@gmail.com
1
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
مازیار
یحیوی
maziar_yahyavi@yahoo.com
2
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
امیر هوشنگ
بحری
amirbahri52@yahoo.com
3
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
حجت الله
جعفریان
hojat.jafaryan@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس، گلستان، ایران
AUTHOR
امینی رنجبر، غ. و میرکی، غ.، 1385. بررسی و شناخت میزان و انواع آلودگیهای ساحلی دریایی عمان در محدوده خلیج چابهار. جهاد دانشگاهی سیستان و بلوچستان. صفحات 8 تا 12.
1
بزی، ع.ا.، 1394. تعیین سطح آلودگی رسوبات سطحی خلیج چابهار به فلزات سنگین. مجله سلامت و محیط، فصل نامه انجمن علمی بهداشت محیط ایران. دوره 8، شماره 1، صفحات 45 تا 56.
2
حسینی، م.؛ باقرنبوی، س.م.؛ گلشنی، ر.؛ نبوی، س.ن. و رئیسی سرآسیاب، ع.، 1394. آلودگی فلزات سنگین (نیکل، مس، سرب، کبالت و کادمیوم) در رسوب و بافتهای کبد و ماهیچه کفشک ماهی Psettodes erumei در استان بوشهر، خلیجفارس. مجله پژوهشهای جانوری (مجله زیستشناسی ایران). جلد 28، شماره 4، صفحات 441 تا 449.
3
دادور، ا.؛ شاپوری، م. و سینایی، م.، 1392. بررسی آلودگی فلزات سنگین در بافتهای ماهیچه و آبشش خرچنگ روح (Ocypode saratan) در سواحل جزر و مدی چابهار. مجله زیستشناسی دریا. سال 5، شماره 19، صفحات 45 تا 56.
4
رزاقی، ف.؛ محمدشفیعی، م.ر. و امتیاز جو، م.، 1389. سنجش کادمیوم، سرب، جیوه و آهن در بافت عضله ماهی شوریده Otolithes ruberدر مناطق شمالی خلیج فارس، بندرعباس. مجله پژوهشهای علوم و فنون دریایی. سال 6، شماره1. صفحات40 تا 49.
5
سلیمانی، م.؛ پاکزاد، ح.ر.؛ پسندی، م.؛ نقره ئیان، م. و کمالی، م.، 1394. بررسی منشأ فلزات سنگین در رسوبات ماسهای بخشی از دریای عمان در محدوده استان سیستان و بلوچستان. مجله زمینشناسی اقتصادی. جلد 7، شماره 1، صفحات 165 تا 176.
6
صدوق نیری، ع.؛ رونق، م.ت. و احمدی، ر.، 1391. بررسی کمی فلزات سنگین در بافت عضله، کبد و آبشش ماهی کفشک (Euryglossa orientalis) در آبهای شمال خلیجفارس. مجله علمی شیلات ایران. سال 21، شماره 1، صفحه 147 تا 160.
7
عریان، ش.؛ تاتینا، م. و قریب خانی، م.، 1389. بررسی اثرات آلودگی نفتی در حوزه شمالی خلیجفارس بر میزان تجمع فلزات سنگین (نیکل، سرب، کادمیوم وانادیوم) در بافت عضله ماهی حلوا سفید (Pampus rgenteus). مجله اقیانوسشناسی. سال 1، شماره 4، صفحات 61 تا 68.
8
عظیمی، ع.؛ داداللهی سهراب، ع.؛ صفاهیه، ع.ر.؛ ذوالقرنین، ح.؛ سواری، ا. و فقیری، ا.، 1390. مطالعه سطوح فلزات سنگین جیوه، کادمیوم، سرب و مس در رسوبات شمال غرب خلیجفارس- بندر امام خمینی (ره). مجله اقیانوسشناسی. سال 3، شماره 11، صفحات 33 تا 41.
9
عینالهی پیر، ف.؛ صفاهیه، ع.ر.؛ داداللهی سهراب، ع. و سواری، ا.، 1390. تجمع فلزات سنگین (مس، سرب و نیکل) در رسوبات و دوکفهای Saccostrea cucullata در ناحیه بین جزر و مدی چابهار. مجله علوم و فنون دریایی. دوره 10، شماره 2، صفحات 10 تا 25.
10
لقمانی، م.، 1395. بررسی تغییرات تراکم پرتاران زیر جزر و مدی خلیج چابهار با تأکید بر نقش فلزات سنگین (مس و روی). مجله بومشناسی آبزیان. دوره 3، شماره 6، صفحات 10 تا 21.
11
موسسهتحقیقاتعلومشیلاتیکشور. 1394. ارزیابی ذخایر و ارائه راهکارهای مدیریتی در راستای بهرهبرداری پایدار از ذخایر آبزیان. 79 صفحه.
12
Abdelrahim, A.A.; Elhadi, M.E. and Mohamed, A.A., 2011. Investigation of Heavy Metals Pollution in Water, Sediment and Fish at Red Sea Jeddah Coast- KSA at Two Different Locations. Journal of Applied Environmental and Biological Sciences. Vol. 1, No. 12, pp: 630-637.
13
Abdolahpur Monikh, M.; Safahieh, A.; Savari, A. and Doraghi, A., 2013. Heavy metal concentration in sediment, benthic, benthopelagic, and pelagic fish species from Musa Estuary (Persian Gulf). Environmental monitoring and assessment. Vol. 185, pp: 215-222.
14
Anand, D. and Kala, S., 2015. Study on Heavy Metal Distribution in the Coastal Environments along the Foremost Places of South-East Coast of India. International journal of innovative research in science, engineering and technology. Vol. 4, No. 3, pp: 1201-1209.
15
APHA. 2005. Standard methods for the examination of water and wastewater. 21st edition. American Public Health Association, Washington DC.
16
Bilos, C.; Colombo, J.C. and Rodriguez, M.J., 1998. Trace metals in suspended particles, sediments and Asiatic clams (Corbicula fluminea) of the Rio de la Plata Estuary. Argentina Managing environmental pollution. Vol. 99, No. 1, pp: 1-11.
17
Birch, G.F., 1996. Sediment bound metallic contaminants in Sydney’s estuaries and adjacent offshore, Australia. Estuarine, coastal and shelf science. Vol. 42, pp: 31-44.
18
BuTayban, N.A. and Preston, M.R., 2004. The distribution and inventory of total and methyl mercury in Kuwait Bay. Marine pollution bulletin. Vol. 49, pp: 930-937.
19
Caplat, C.; Texier, H.; Barillier, D. and Lelievre, C., 2005. Heavy metals mobility in harbour contaminated sediments: The case of Port en Bessin. Mar. Pollut. Bull. Vol. 50, PP: 504-516.
20
CCME (Canadian Council of Ministers of the Environment). 1999. Canadian environmental Quality Guideline, From Publication No. 1299, ISBN1-896997-341 p.
21
Chesalin, M.V. and Zuyer, G.V., 2002. Pelagic cephalopods of the Arabian Sea with an emphasis on Sthenoteuthis oulaniensis. Bulletin of Marine Science. Vol. 11, pp: 209-227.
22
Chouvelon, T.; Warnau, M.; Churlaud, C. and Bustamante, P., 2009. Hg oncentrations and related risk assessment in coral reef crustaceans, molluscs and fish from New Caledonia. Environment and pollution. Vol. 11, pp: 331–340.
23
Darmono, D. and Denton, G.R.W., 1990. Heavy metals concentration in the banana prawn Penaeusmerguiensis and leader prawn P. monodon in the Townsvile region of Australia. Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 44, pp: 479-486.
24
Davari, A.; Danehkar, A.; Khorasani, N. and Javanshir, A., 2010. An Investigation on accumulation of heavy metals in roots and leaves of Avicennia marina sediment, Bushehr, the Persian Gulf. Journal of Ecology and the Natural Environment (Iranian Journal of Natural Resources). Vol. 63, No. 3, pp: 267-277.
25
De Astudillo, L.R.; Yen, I.C. and Berkele, I., 2005. Heavy metals in sediments mussels and oysters from Trinidadand Venezuela. Revista de biología tropical. Vol. 53, pp: 41-53.
26
Delman, O.; Demirak, A. and Balci, A., 2006. Determination of heavy metals (Cd, Pb) and trace elements (Cu, Zn) in sediments and fish of the southeastern Aegean Sea (Turkey) by atomic absorption spectrometry. Food chemistry. Vol. 26, pp: 157-162.
27
Ergin, M.; Saydam, C.; Baştürk, Ö.; Erdem, E. and Yörük, R., 1991. Heavy metal concentrations in surface sediments from the two coastal inlets (Golden Horn Estuary and İzmit Bay) of the northeastern Sea of Marmara. Chemical geology. Vol. 91, No. 3, pp: 269-285.
28
FDA. 2011. Fish and Fishery Products Hazards and Controls Guidance, 14th edition. Department of health and human service public health food and drug administration center for food safety and applied nutrition of food safety. 476 p.
29
Förstner, U. and Wittmann, G.T.W., 1981. Metal Pollution in the Aquatic Environment (2nd rev ed.), Berlin; New York. 486 p.
30
Geffard, A.; Quéau, H.; Dedourge, O.; Biagianti Risboug, S. and Geffard, O., 2007. Influence of biotic and abiotic factors on metallothionein level in Gammarus pulex. Comp. Comparative biochemistry and physiology. Part C, Pharmacology, toxicology and endocrinology. Vol. 145, No. 4, pp: 632-640.
31
Gesamp, 1987. IMO/FAO/UNESCO/WMO/WHO/IAEA/ UN/UNEP Joint Group of Experts on the Scientific Aspects of Marine Pollution: Report of the seventeenth session. Geneva, Switzerland: World Health Organization, (Reports and Studies No. 31).GESAMP Rep. Stud. Vol. 32, pp: 1-172.
32
Golovanova, I.L., 2008. Effect of heavy metals on the physiological and biochemical status of fishes and aquatic invertebrates. Inland water biology. Vol. 1, pp: 93-101.
33
Goyer, R.A., 1996. Toxic effects of metals. In Casarett and Doull’s Toxicology: The Basic Science of Poisons, 5th ed. C.D. Klaassen, Ed. McGraw Hill, New York.
34
Groger, J.; piatkowski, U. and Hiemann, H., 2000. Beak length analysis of the Southern Ocean squid Psychroteuthis glacialis (Cephalopoda psychroteuthidae) and its use for size and biomass estimation. Polar Biology. Vol. 23, pp: 70-74.
35
Gu, Y.G.; Lin, Q.; Wang, X.H.; Du, F.Y.; Yu, Z.Y. and Huang, H.H., 2015. Heavy metal concentrations in wild fishes captured from the South China Sea and associated health risks. Marine pollution bulletin. Vol. 96, pp: 508-512.
36
Heath, A.G., 1987. Water Pollution and Fish Physiology. CRC Press, Inc, Florida, USA. 245 p.
37
Kanakaraju, D.; Ibrahim, F. and Berseli, M.N., 2008. Comparative study of heavy metal concentrations in Razor Clam (Solen regularis) in Moyan and Serpan, Sarawak. Journal of advances in modeling earth systems. Vol. 2, No. 2, pp: 87-91.
38
Karbassi, A.R.; Heidari, M.; Vaezi, A.R.; Sam ani, A.R.V.; Fakhraee, M. and Heidari, F., 2013. Effect of pH and salinity on flocculation process of heavy metals during mixing of Aras River water with Caspian Sea water. Environmental Earth Sciences. pp: 1-9.
39
Kavun, V.Y. and Shul’kin, V., 2005. Changes in the microelementcomposition in organs and tissues of the bivalve Crenomytilus grayanus acclimatized in a biotope with long-term heavy metal contamination. Russian Journal of Marine Biology. Vol. 31, No. 2, pp: 109-114.
40
Kilemade, M.; Hartl, M.G.J.; Sheehan, D.; Mothersill, C.; Pelt, F.N.A.; Berien, N.M.O. and Halloran, J.O., 2004. An assessment of the pollutant status of surficial sediment in Cork harbour in the south east of Ireland with particular reference to polycyclic aromatic hydrocarbons. Marine pollution bulletin. Vol. 49, pp: 1084-1096.
41
Long, E.R.; MacDonald, D.D.; Severn, C.G. and Hong, C.B., 2000. Classifying probabilities of acute toxicity in marine sediments with empirically derived sediment quality guidelines. Toxicological and environmental chemistry. Vol. 19, pp: 598-601.
42
Luoma, S.N. and Rainbow, P.S., 2008. Metal contamination in aquatic environments: science and lateral Heavy metals mobility in harbour contaminated sediments: The case of Port en Bessin. Marine pollution bulletin. Vol. 50, pp: 504-516.
43
Mendoza Carranza, M.; Sepúlveda Lozada, A.; Dias Ferreira, C. and Geissen, V., 2016. Distribution and bioconcentration of heavy metals in a tropical aquatic food web: A case study of a tropical estuarine lagoon in SE Mexico. Environment and pollution. Vol. 210, pp: 155-165.
44
MOOPAM. 1999. Manual of oceanographic observations and pollutant analyses methods. Kuwait. Vol. 20.
45
Movahed, A.; Dehghan, A.; Haji Hosseini,R.; Akbarzadeh, S.; Zendehboudi, A.A.;NafisiBehabadi, M.; Mohammadi, M.M.; Hajian, N.; Pakdel, F.; Hefzulla, A.and Iranpour, D., 2013. Evaluation of heavy metals in the tissues of different species of shrimps collected from coastal waters of Bushehr, Persian Gulf. Iranian South Medical Journal. Vol. 16, No. 2, pp: 100-109.
46
Nasr, M.S.; Okbah, M.A. and Kasem, Sh. M., 2006. Environmental Assessment of Heavy Metal Pollution in Bottom Sediments of Aden Port, Yemen. International Journal of Oceans and Oceanography. Vol. 1 No. 1, pp: 99-109.
47
Olusola, J. and Festus, A., 2015. Assessment of Heavy Metals in Some Marine Fish Species Relevant to their Concentration in Water and Sediment from Coastal Waters of Ondo State, Nigeria. Journal of Marine Science: Research and Development. Vol. 5, No. 2, pp: 163.
48
Páez Osuna, F. and Ruiz Fernández, C., 1995. Trace metals in the Mexican shrimp Penaeus vannamei from estuarine and marine environments. Environment and pollution. Vol. 87, pp: 243- 247.
49
Roberts, J.R., 1999. Metal toxicity in children. In Training Manual on Pediatric Environmental Health: Putting It into Practice. Emeryville, CA: Children’s Environmental Health Network (http://www.cehn.org/ ehn/trainingmanual/pdf/ manual-full.pdf,
50
Sheppard, C.C., 2001. Physical and environmental of the Gulf relevant to marine pollution. Marine pollution Bulletin, Vol. 27, pp: 48 -52.
51
Sinem Atgin, R.; El Agha, O.; Zarars ız, A.; Kocataş, A.; Parlak, H. and Tuncel, G., 2000. Investigation of the sediment pollution in Izmir Bay: trace elements. Spectrochimica acta. Part B, Atomic spectroscopy. Vol. 55, No. 7, pp: 1151-1164.
52
Sorensen, E.M.B., 1991. Editor. Metal Poisoning in Fish. 1st ed. Boca Raton, Florida, CRC Press. 347 p.
53
Taweel, A.; Shuhaimi Othman, W. and Ahmad, A.K., 2013. Assessment of heavy metals in tilapia fish (Oreochromis niloticus) from the Langat River and Engineering Lake in Bangi, Malaysia and evaluation of the health risk from tilapia consumption. Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 93, pp: 45-51.
54
Ugolini, A.; Borghini, F.; Calosi, P.; Bazzicalupo, M.; Chelazzi, G. and Focardi, S., 2004. Mediterranean Talitrus saltator (Crustacea, Amphipoda) as a biomonitor of heavy metals contamination. Marine pollution bulletin. Vol. 48,pp: 526-532.
55
USEPA. 1999. Technical Guiddance for Screening Contaminated Sediments. New York State Department of Environmental Conservation. 32 p.
56
Warren, L.A., 1998. Modeling cadmium accumulation by benthic invertebrates in situ: the relative contributions of sediment and overlying water reservoirs to organism cadmium concentrations. Limnology and Oceanography. Vol. 43, pp: 1442-1454.
57
WHO. 1979. Mercury. In environmental health criteria 1, World Health Organization, Geneva.
58
WHO. 1990. Methylmercury in environmental health criteria 101, World Health Organization, Geneva.
59
WHO. 1995. Health risks from marine pollution in the Mediterranean. Part 1 Implications for Policy Markers. 25 p.
60
Yang, Y.; Chen, F.; Zhang, L.; Liu, J.; Wu, S. and Kang, M., 2012. Comprehensive assessment of heavy metal contamination in sediment of the Pearl River Estuary and adjacent shelf. Marine pollution bulletin. Vol. 64, No. 9,
61
pp: 1947 1955.
62
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تجمع فلزات سنگین در عضله ماهیان کفشک تیزدندان (Psettodes erumei)، گیش ماهی (Carangoides fulvoguttatus) و ماهی هوور (Thunnus tonggol) آب های بوشهر
فلزات سنگین از مهم ترین آلاینده های محیط زیست به شمار می روند که از طریق زنجیره غذایی در بدن آبزیان تجمع می یابند. هدف از این تحقیق، اندازه گیری میانگین غلظت فلزات سنگین سرب، آهن، روی، کروم، نیکل و کادمیوم عضله کفشک تیز دندان (Psettodes erumei)، گیش ماهی (Carangoides fulvoguttatus) و ماهی هوور (Thunnus tonggol) در بوشهر و مقایسه آن با استاندرد جهانی می باشد. 30 نمونه از هر ماهی مورد مطالعه، از صید روزانه صیادان بوشهر تهیه شدند. پس از شست و شو، بافت عضله خوراکی جداسازی و پس از انجام عملیات هضم اسیدی، غلظت فلزات سنگین نمونه ها به وسیله دستگاه جذب اتمی اندازه گیری شد. میانگین غلظت فلزات سنگین روی، سرب، کادمیوم، نیکل، آهن و کروم در عضله کفشک تیز دندان به ترتیب 0/14±3/11، 0/10±3/20، 0/21±2/64، 0/01±0/36 0/33±15/44 و 0/05±0/40 میلی گرم بر کیلوگرم، در عضله گیش ماهی به ترتیب 0/07±1/24، 0/01±0/33، 0±0/02 ،0±0/35 ،32/0±49/11 و 06/0±.61/0. میلیگرم بر کیلوگرم و هوور بهترتیب 14/0±34/2، 12/0±82/1، 0±02/0، 0±27/0، 07/0±37/13 و 0/01±0/30 میلی گرم بر کیلوگرم تعیین گردید. تحلیل آماری نتایج، مبین وجود اختلاف معنی دار غلظت عناصر آهن، روی و سرب در ماهی های مورد بررسی بود (0/05>P). در حالی که غلظت کروم در بین ماهی های مختلف معنی دار نبود. (0/05<P). نتایج مطالعه حاضر بیانگر غلظت پایین فلزات سنگین روی، کروم، آهن و نیکل اندازه گیری شده در عضله ماهیان مورد بررسی شده در مقایسه با استاندارد جهانی است.
http://www.aejournal.ir/article_69322_f666fa12b420cdb15302caf962f3a97b.pdf
2018-06-22
129
134
کفشک تیزدندان
گیش ماهی
هوور
فلزات سنگین
آلودگی زیست محیطی
امین
غلامحسینی
1
بخش آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
مصطفی
اخلاقی
2
بخش آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
پریا
اکبری
paria.akbary@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، بندر چابهار، ایران
LEAD_AUTHOR
سیاووش
سلطانیان
4
بخش آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
وحیده
نقدسی
5
بخش آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
محمدسعید
فریدونی
6
بخش آبزیان، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شیراز، شیراز، ایران
AUTHOR
بندانی، غ.؛ خوشباور رستمی، ح.؛ یلقی، س.؛ شکرزاده، م. و نظری، ح.، 1389. سطح فلزات سنگین (سرب، کادمیوم، کروم و روی) در بافت عضله و کبد ماهی کپور (Cyprinus carpio) سواحل استان گلستان. مجله علمی شیلات ایران. سال 19، شماره 4، صفحات 1 تا 10.
1
پروانه، م.؛ خیرور، ن.؛ نیک پور، ی. و نبوی، م.، 1390. غلظت فلزات سنگین در ماهی کفشک گرد (Euryglossa orientalis) و رسوبات خور موسی در استان خوزستان. مجله علمی شیلات ایران. سال 20، شماره 2، صفحات 17 تا 26.
2
جلالی جعفری، ب. وآقازاده مشگی، م.، 1385. مسمومیت ماهیان در اثر فلزات سنگین آب و اهمیت آن در بهداشت عمومی. انتشارات مان کتاب. چاپ اول. 140 صفحه.
3
شهاب مقدم، ف.؛ اسماعیلی ساری، ع.؛ ولی نسب، ت. و کریم آبادی، م.، 1389. مقایسه تجمع فلزات سنگین در عضله سپر ماهی چهار گوش (Himantura gerrardi) و گیش چشم درشت (Selar crumenophthalmus) خلیج فارس. مجله علمی شیلات ایران. سال 19، شماره 2، صفحات 85 تا 94.
4
صادقی، ن.، 1380. ویژگی های زیستی و ریخت شناسی ماهیان جنوب ایران (خلیج فارس و دریای عمان). انتشارات نقش مهر. چاپ اول. 440 صفحه.
5
عسگری ساری، ا.، 1388. بررسی عناصر سنگین (سرب، جیوه و کادمیوم) در ماهیان بومی آب شیرین صبد رودخانه های (Liza abu) و بیاح (Barbus gyrpus) شیربت کارون و کرخه در فصل زمستان. مجله بیولوژی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 2، شماره 4، صفحات 97 تا 107.
6
عسگری ساری، ا.؛ ولایت زاده، م.؛ بهشتی، م. و خدادادی، م.، 1389. میزان تجمع فلزات سنگین جیوه، سرب و کادمیوم در بافت های ماهی بیاح (Liza abu) رودخانه های کارون و بهمنشیر استان خوزستان. مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. شماره 1، صفحات 61 تا 69.
7
فاضلی، م.ش.؛ ابطحی، ب. و صباغ کاشانی، آ.، 1384. سنجش تجمع فلزات سنگین سرب، نیکل و روی در بافت های ماهی کفال (Liza aurata) سواحل جنوبی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. شماره 14، صفحات 65 تا 78.
8
نبی زاده، س. و پورخباز، ع.ر.، 1392. بررسی تجمع فلزات سنگین کادمیوم و نیکل در بافت های ماهی زمین کن (Platycephalus indicus) در تالاب حرا. مجله مهندسی محیط زیست. شماره 1، صفحات 39 تا 44.
9
Abu Hilal, A.H. and Ismail, N.S., 2008. Heavy metals in eleven common species of fish from the Gulf of Aqaba, Red Sea. Jordan Journal of Biological Sciences. Vol. 1, pp: 13-18.
10
Alinejad. S.; Shoaibi Omrani, B.; Shokrzadeh, M.; GhaemMaghami,S.; Yasemi, M. andAmini Fard, A., 2014. Heavy metals accumulation in muscles of Psettodes erumei in Boushehr waters. Nutrient and Biochemistry in Aquaculture. Vol. 2, pp: 45-53.
11
Begum, A.; Hari Krishna, S. and Khan, I., 2009. Analysis of heavy metals in water, sediments and fish samples of Madivala Lakes of Bangalore, Karnataka. International Journal of Chemistry and Technology Research. Vol. 1, pp: 245-249.
12
Cheng, W.W.L. and Gobas, F.A.P.C., 2007. Assessment of human health risks of consumption of cadmium contaminated cultured oysters. Human and Ecological Risk Assessment. Vol. 13, pp: 370-382.
13
FAO. 2004. Statistical databases. Food and Agriculture Organization. 145 p.
14
Jarup, L.; Berglund, M. and Elinder, C.G., 1998. Health effects of Cadmium exposure a review of the literature and a risk estimate. Journal of work Environmental Health. Vol. 24, pp: 1-51.
15
Kargar, A.; Tabiee, O.; Cheraghi, M. and Lorestani, B., 2011. A comparative study of Vanadium and Nickel levels in muscles of male and female Indian white prawn (Fenneropenaeus indicus) in market Shiraz in 2011. Journal of Food Hygiene. Vol. 3, pp: 71-85.
16
Harikumar, P.S.; Nasir, V.P. and Mujeebuahman, M.P., 2009. Distribution of heavy metals in the core sediments of a tropical wetland system. International Journal of Environmental Science and Technology. Vol. 6, No. 2, pp: 225-232.
17
Pourang, N. and Amini, G., 2001. Distribution of trace elements in tissues of two shrimp species from Persian Gulf and effects of storage temperature on elements transportation. Water, Air and Soil Pollution. Vol. 129, pp: 229-243.
18
Rauf, A.; Javad, M. and Ubaidullah, M., 2009. Heavy metal levels in three major carps from the river Ravi, Pakistan. Pakistan Veterinary Journal. Vol. 29, pp: 24-26.
19
Razavi, S.M.R.; Vahabzadeh, H.; Zamini, A.; Askary Sary, A. and Velayatzadeh, M., 2012. Measured and Comparison of heavy metals Hg, Pb, Cd in the muscle and shell of Fenneropenaeus indicus Persian Gulf (Bahrekan, Khuzestan Province). Journal of Aquatic Animals and Fisheries. Vol. 3, pp: 43-90.
20
Roberts, R.J., 2012. Fish pathology. 4th ed., W.B. Saunders, UK. 581p.
21
Shahriari, A., 2005. Determination of cadmium, chromium, lead and nickel in edible tissues of Tiger-Toothed Croaker and Russels snapper from Persian Gulf in 2003. Journal of Gorgan University of Medical Sciences. Vol.2, pp: 65-67.
22
Shokrzadeh, M. and Saeedi Saravi, S.S., 2010. The study of heavy metals (lead, cadmium and chromium) in three species of most consumed fish's sampled form Gorgan coast (Iran). Toxicological and Environmental Chemistry. Vol. 92, pp: 71-73.
23
Spears, J.W.; Harvey, R.W. and Samell, L.J., 1986. Effects of dietary nickel and protein on growth, nitrogen metabolism and tissue concentrations of nickel, iron, zinc, manganese and copper in Calves.Journal of Nutrition. Vol. 116,pp: 1873-1882
24
ORIGINAL_ARTICLE
ساختار جمعیتی ماهی شوریده (Otolithes ruber) در سواحل شمالی خلیج فارس
ماهی شوریده Otolithes ruberیکی از ماهیان تجاری مهم خلیج فارس می باشد. در این تحقیق با به کارگیری روش چندشکلی طولی (AFLP) ساختار جمعیتی و میزان تنوع این گونه در 6 منطقه خورموسی، هندیجان، گناوه، بوشهر، دیر و عسلویه بررسی گردید. در مجموع 345 باند با به کاربردن 7 جفت پرایمر انتخابی (3+) به دست آمد که به طورمیانگین 37/2% چندشکلی را نشان می دادند. بیش ترین و کم ترین درصد پلی مورفیسم به ترتیب با جفت پرایمر(E-AAG/M-CAT(39% و E-ACA/M-CAG (%25 حاصل گردید. میانگین تنوع ژنتیکی (h) و شاخص شانن به ترتیب 0/28 و 0/46 محاسبه شد. در جمعیت بوشهر بیش ترین میزان شاخص تنوع ژنتیکی و شاخص شانن (I) به ترتیب به میزان 0/33 و 0/5 به دست آمد. ارزش شاخص Fst در بین جمعیت ها در محدوده 0/022 تا 0/23 بود. شاخص Fst و آنالیز AMOVA اختلاف معنی داری را بین جمعیت ها نشان می دهند. براساس آنالیز Fst و دندروگرام شباهت افراد، سه جمعیت از ماهی شوریده در خورموسی، بوشهر و دیر قابل تفکیک می باشد. اما تمایز ژنتیکی بین جمعیت ها بالا نبود.
http://www.aejournal.ir/article_69358_3bbdad57a8748cba4b5884c522943a91.pdf
2018-06-22
135
142
ماهی شوریده
تنوع ژنتیکی
ساختار جمعیت
خلیج فارس
ایران
سید احمد
قاسمی
aqasemi@gmail.com
1
گروه زیست فناوری، پژوهشکده خلیج فارس، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر
LEAD_AUTHOR
سیدجواد
حسینی
sjhosseini@pgu.ac.ir
2
گروه زیست فناوری، پژوهشکده خلیج فارس، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر
AUTHOR
اسکندری، غ.؛ سواری، ا.؛ کوچنین، پ. و تقوی مطلق، س. ا.، 1392. روند ساختار طولی صید، ضرایب مرگ و میر و بهره برداری ماهی شوریده (Otolithes ruber) در 5 سال گذشته در شمال غربی خلیج فارس. مجله علمی شیلات ایران، شماره8، صفحه90.
1
سالاری علی آبادی، م.ع.؛ راستگو، ع.ر.؛ محمدی، م.؛ ارچنگی، ب. و قاسمی، س. ا.؛ 1390. ساختار جمعیتی ماهی سنگسر معمولی (Pomadasys kaakan Cuvier, 1830) با استفاده از نشانگرهای مولکولی AFLP در خلیج فارس. علوم و فنون شیلات، سال 1، شماره 1، صفحه 27 تا 37.
2
شریفی، م.؛ سوری نژاد، ا.؛ حسینی، ج.؛ قاسمی، ا. و فقیه، ا.، 1391. بررسی تنوع ژنتیکی ماهی حلواسیاه Parastromateus niger در سواحل ایرانی خلیج فارس با استفاده از نشانگر ملکولی AFLP . مجله بوم شناسی. دوره 2، شماره 2، صفحات 61 تا 81.
3
فقیه احمدانی، ا.؛حسینی، س.ج. و قاسمی، س.ا.، 1390. مطالعه کروموزومی ماهی مید Liza klunzingeri و بررسی تنوع ژنتیکی آن در خور زیارت (استان بوشهر) و رودخانه زهره (استان خوزستان) با استفاده از نشانگرAFLP . پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه آزاد اسلامی واحد ا هواز. 83 صفحه.
4
فکراندیش، ح.؛ کمالی، ا.؛ حسینی، س.ج. وسلطانی، م.، 1392.مطالعه تنوع ژنتیکی ماهی زمین کن دم نواری (Platycephalus indicus Linnaeus, 1758) در خلیج فارس با استفاده از نشانگرهای AFLP. رساله دکتری، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران. 125 صفحه.
5
نصری، م.؛ قاسمی، ا. و قریب خانی، م. 1395. بررسی تنوع ژنتیکی ماهی شوریده (Otolithes ruber) در خلیج فارس و دریای عمان با استفاده از توالی یابی ژن 16s rRNAمیتوکندریایی. مجله علمی- پژوهشی زیست شناسی دریا. سال 8، شماره 31، صفحات 1 تا 12.
6
Excoffier, L., and Lischer, H.E., 2010. Arlequin suite ver 3.5: a new series of programs to perform population genetics analyses under Linux and Windows.Molecular ecology resources. Vol. 10, No. 3, pp: 564-567.
7
Excoffier, L.; Laval, G. and Schneider, S., 2005. Arlequin version 3.0: an integrated software package for population genetics data analysis. Evolution Bioinformatics. Vol. 1, pp: 47-50.
8
Excoffier, L.; Smouse, P.E. and Quattro, J.M., 1992. Analysis of molecular variance inferred from metric distances among DNA haplotypes: application to human mitochondrial DNA restriction data. Genetics. Vol. 131, pp: 479-491.
9
IUCN (International Union for Conservation of Nature). 2007. The IUCN red list of threatened species, Available: http: //www. iucnredlist.org.
10
Liu, Z., 2007. Aquaculture Genome Technologies. First edition, Blackwell Publishing, Australia. 551 p.
11
Liu, F.; Shi, H Z.; Guo, Q.S.; Lv, F.; Yu, Y.B.; Lv, L.L. and Zhang, M.M., 2015. Analysis of the genetic diversity and population structure of Perinereis aibuhitensis in China using TRAP and AFLP markers. Biochemical Systematics and Ecology. Vol. 59, pp: 194-203.
12
Mickett, K.; Morton, C.; Feng, J.; Li, P.; Simmons, M.; Cao, D.; Dunham, R.A. and Liu, Z., 2003. Assessing genetic diversity of domestic populations of channel catfish (Ictalurus punctatus) in Alabama using AFLP markers. Aquaculture. Vol. 228, pp: 91-105.
13
Mughal, M., 2013. Persian Gulf Desert and Semi-desert. Biomes & Ecosystems. Vol. 3, Robert Warren Howarth (ed.). Ipswich, MA: Salem Press. pp: 1000-1002.
14
Nei, M., 1972. Genetic distance between populations. Am. Nat. Vol. 106, 283e292.
15
Nei, M. and Li, W.H., 1979. Mathematical model for studying genetic variation in terms of restriction endonucleases. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. Vol. 76, pp: 5269-5273.
16
Peakall, R. and Smouse, P.E., 2006. GENALEX 6: genetic analysis in excel. Population genetic software for teaching and research. Molecular Ecology. Vol. 6, pp: 288-295.
17
Qian, X.; Fei, C.; Shin, P.K.S.; Cheung, S.G.; Yan, C. and Caihuan, K., 2011. AFLP analysis of genetic variation among three natural population of horseshoe crab Tachypleus tridentatus along Chinese coast. Chinese journal of Oceanology and limnology. Vol. 29, pp: 284-289.
18
Reed, D.H. and Frankham, R., 2002. Correlation between fitness and genetic diversity. Conserv. Biol. Vol. 17, pp: 230-237.
19
Sambrook, J. and Russell, D.W., 2001. Molecular cloning: a laboratory manual. Cold Spring Laboratory Press, NewYork.
20
Smith Vaniz, W.F., 1984. Carangidae: relationships. In: Moser, H.G., Richards, W.J., Cohen, D.M., Fahay, M.P., Kendall Jr., A.W., Richardson, S.L. (Eds.), Ontogeny and Systematics of Fishes. Am. Soc. Ichthyol. Herpetol. Spec. Publ. Vol. 1, pp: 522-530.
21
Song, N.; Zhang, X.M. and Gao, T.X., 2010. Genetic diversity and population structure of spottedtail goby (Synechogobiusommaturus) based on AFLP analysis. Biochemical Systematics and Ecology. Vol. 38, No. 6, pp: 1089-1095.
22
Vos, P.; Hogers, R.; Bleeker, M.; Reijans, M.; Van de Lee, T.; Hornes, M. and Zabeau, M., 1995. AFLP: a new technique for DNA fingerprinting. Nucleic acids research. Vol. 23, No. 21, pp: 4407-4414.
23
Wang, Z.Y.; Jayasankar, P. and Khoo, S.K., 2000. AFLP fingerprinting reveals genetic variability in common carp stocks from Indonesia. Asian Fish. Sci. Vol. 13, pp: 139–147.
24
Xu, Q.; Chen, F.; Shin, P.K.; Cheung, S.G.; Chen, Y. and Ke, C., 2011. AFLP analysis of genetic variation among three natural populations of horseshoe crab Tachypleus tridentatus along Chinese coast. Chinese Journal of Oceanology and Limnology. Vol. 29, pp: 284-289.
25
Yao, X.; Deng, J. and Huang, H., 2012. Genetic diversity in Eucommia ulmoides (Eucommiaceae), an endangered traditional Chinese medicinal plant. Conserv. Genet. Vol. 13, pp: 1499-1507.
26
Young, W.P.; Wheeler, P.A.; Coryell, V.H.; Keim, P. and Thorgaard, G.H., 1998. A detailed linkage map of rainbow trout produced using doubled haploids. Genetics. Vol. 148, pp: 839-850.
27
Yuan, L.; Hu, C. and Zhang, L., 2013. Population genetics of a tropical sea cucumber species (Stichopus monotuberculatus) in China. Conserv. Genet. Vol. 14, pp: 1279-1284.
28
Zhang, H.; Yu, H.; Gao, T.; Zhang, Y.; Han, Z. and Xiao, Y., 2012. Analysis of genetic diversity and population structure of Pleuronectes yokohamae indicated by AFLP markers. Biochemical Systematics and Ecology. Vol. 44, pp: 102-108.
29
Zhao, F.; Dong, Y.; Zhuang, P.; Zhang, T.; Zhang, L. and Shi, Z., 2011. Genetic diversity of silver pomfret (Pampus argenteus) in the Southern Yellow and East China Seas. Biochemical Systematics and Ecology. Vol. 39, pp: 145-150.
30
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین اسپکتروفتومتری لیتیم درسرم خون ماهی کفال طلایی (Lizza aurata) و ساردین دم سیاه (Sardinella Melanura) در خلیج چابهار با استفاده از معرف تورین
در این مطالعه واکنش گر تورین، در یک محیط قلیایی آب و استون با لیتیم تولید رنگ کرده و به طور مستقیم، با استفاده از روش ساده، ایمن و ارزان اسپکتروفتومتری برای اندازه گیری لیتیم در سرم خون دو گونه از ماهیان خلیج چابهار (ماهی کفال طلایی و ساردین دم سیاه) به کار رفته است. در زمستان سال 1395 از هر گونه ماهی 15 عدد صید و خونگیری به عمل آمد و سرم خون جدا گردید. عوامل موثر بر واکنش تشکیل کمپلکس لیتیم-تورین مانند زمان واکنش، غلظت تورین، میزان پتاسیم هیدروکسید و استون بهینه سازی شدند و تحت شرایط بهینه، ضریب همبستگی، محدوده خطی و انحراف استاندارد (7=n) روش به ترتیب 0/994، 3-0/05 میلیاکی والان بر لیتر و 0/82 درصد به دست آمدند. نتایج نشان دادند معرف تورین واکنش گری موثر و واکنش پذیر با لیتیم در سرم خون ماهی بوده و بر این اساس میانگین غلظت لیتیم در دو گونه ماهی مورد مطالعه در خلیج چابهار 0/22 میلی اکی والان بر لیتر اندازه گیری شد. داده های حاصل از این تحقیق با استفاده از روش t-test ناجور یا مستقل با استفاده از نرم افزار SPSS در سطح اطمینان 95 درصد مورد بررسی قرار گرفت که نشان داد مقدار لیتیم موجود در سرم خون این دو گونه ماهی اختلاف معنی داری با هم ندارند.
http://www.aejournal.ir/article_69396_3ef706e878064529f196c34ececf8962.pdf
2018-06-22
143
148
لیتیم
سرم خون ماهی
تورین
طیف سنجی فرابنفش
خلیج چابهار
مرتضی
ضیاءالدینی
m.ziyaadini@cmu.ac.ir
1
گروه شیمی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی، چابهار
LEAD_AUTHOR
میر مهدی
زاهدی
idm.m.zahedi@gmail.com
2
گروه شیمی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی، چابهار
AUTHOR
آزاده
دهقان رحیمی
a.dehghanrahimi1369@gmail.com
3
گروه شیمی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی، چابهار
AUTHOR
Elielton, C.; Espírito, S.; Teresa, M. and Carvalho, J., 2014. Determination of serum lithium: comparison between atomic emission and absorption spectrometry methods. Journal of Bras Patol Med Lab. Vol. 50, No. 1,
1
pp: 12-19.
2
Johnson, F.N., 1981. The Use 01 Fish in Studying the Behavioral Effects of Lithium. Phannacopsychiat. Vol. 14, pp: 208-212.
3
Leonard, A.; Hantson, Ph. and Gerber, G.B., 1995. Mutagenicity, carcinogenicity teratogenicity of lithium compounds. Mutat. Res./Rev. Genet. Toxicol. Vol. 339, No. 3, pp: 131-137.
4
Marczenko, Z.; Balcerzak, M. and Kloczko, E., 2000. Separation, Preconcentration and Spectrophotometry in Inorganic Analysis: Elsevier Scienc.
5
Pérez-Granados, A.M. and Vaquero, M.P., 2002. Silicon, aluminium, arsenic and lithium: essentiality and human health implications. Journal of Nutr Health Aging.Vol. 6, pp: 154-162.
6
Schrauzer, G.N., 2002. Lithium: occurrence, dietary intakes, nutritional essentiality. Journal of Amreican Coll Nutrition. Vol.21, No. 1, pp: 14-21.
7
Uesugi, K. and Murakami, T., 1966. Spectrophotometric determination of lithium in sea water using thorin. Bunseki kagaku. Vol. 15, No. 5, pp: 482-487.
8
Young, W., 2009. Review of lithium effects on brain and blood. Cell Transplant. Vol.18, pp: 951-975.
9
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه تفاوتهای شکلی جمعیتهای ماهی کولی ارومیه (Alburnus atropatenae)
ماهی کولی ارومیه (Alburnus atropatenae) بومزاد رودخانههای حوضه دریاچه ارومیه است. در این مطالعه تعداد 274 قطعه ماهی کولی ارومیه از هفت رودخانه آقدره، نازلوچای، باراندوز، ساروق، زرینهرود، سنته و تلخهرود مورد بررسی قرار گرفت. در بررسی ریختسنجی هندسی در موقعیت لندمارکهای شماره 2، 3، 8، 7 و 9 بیش ترین تغییرات مشاهده شد. هم چنین در تحلیل متغیرهای کانونی (CVA) جمعیت تلخهرود تا حدودی از سایر جمعیتها و جمعیت نازلوچای به طور کامل از جمعیت سنته و زرینهرود جدا شد. نتایج آنالیز معنیداری تفاوتهای شکلی نشان داد بین جمعیتهای باراندوز و تلخهرود، باراندوز و نازلوچای، و زرینهرود و سنته تفاوت معنیداری وجود ندارد (0/0001<P)، که از بین این جمعیتها، دو جمعیت زرینهرود و سنته بیش ترین همپوشانی را نشان دادند. تفاوت معنیداری بین دو جمعیت آقدره و تلخهرود، و تلخهرود و زرینهرود بود و کاملاً از هم جدا نشان داده شدند (0/0001>P). بیش ترین تفاوتها و جابجاییها در بین دو جمعیت آقدره و تلخهرود مشاهده شد. روش ریختسنجی هندسی با وجود دارا بودن اختلاف معنیداری بین هفت جمعیت تنها توانست ماهیان جمعیت تلخهرود را از سایر جمعیتها تا حدودی جدا کند.
http://www.aejournal.ir/article_69411_e66313f55ed1ae4101b08cac9e490183.pdf
2018-06-22
149
160
کپورماهیان
زرینهرود
تلخهرود
پروکراست
شکل بدن
زینب
تاجیک
tajik1987@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، صندوق پستی: 83111-84156، ایران
AUTHOR
یزدان
کیوانی
keivany@iut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، صندوق پستی: 83111-84156، ایران
LEAD_AUTHOR
Banimasani, M.; Keivany, Y. and Ebrahimi, E., 2017. Comparative geometric morphometric study of Capoeta fusca populations. J. Env. Anim. Biol.: In press.
1
Bookstein, F.L., 1997. Landmark methods for forms without landmarks: localizing group differences in outline shape. In: Workshop on Mathematical Methods in Biomedical Image Analysis. (eds. Rohlf, F.J and Bookstein, F.L.). Vol. 1, pp: 225-243.
2
Coad, B.W., 2017. Freshwater Fishes of Iran. www.briancoad.com.
3
Doherty, D. and McCarthy, T.K., 2004. Morphometric and meristic charateristics analysis of two westwrn Irish populations of Asctic Char, Salvelinus alpinus, Biology and Enviroment. Proc.Roy. Iri. Acad. Vol. 104, pp: 75-85.
4
Eagderi, S.; Esmaeilzadegan, E. and Maddah, A., 2013. Body shape variation in riffle minnows (Alburnoides eichwaldii De Filippii, 1863) populations of Caspian Sea basin. Taxon. Biosyst. Vol. 5, No. 14, pp: 1-8.
5
Esmaeili, H.R.; Mehraban, H.; Abbasi, K.; Keivany, Y. and Coad, B., 2017. Review and updated checklist of freshwater fishes of Iran: Taxonomy, distribution and conservation status. Iran. J. Ichthyol. Vol. 4, Suppl. 1,
6
pp: 1-114.
7
Jonning, S.; Reynolds, J.D. and Mills, S.C., 2002. Life history correlates of response to fisheries expoitation. Fish. Proc. Roy. Soc. Lond. Vol. 265, pp: 333-339.
8
Keivany, Y., 2008. A summary of phylogenetic fish systematics. Isfahan University of Technology Press. 220 p.
9
Keivany, Y.; Nasri, M.; Abbasi, K. and Abdoli, A., 2016. Atlas of inland water fishes of Iran. Iran Department of Environment Press. 218 p.
10
Mitteroecker, P. and Bookstein, F.L., 2007. The conceptual and statistical relationship between modularity and morphological integration. Syst. Biol. Vol. 56, pp: 818-836.
11
Mouludi-Saleh, A.; Keivany, Y. and Jalali, S.A.H., 2017. Geometric Morphometric Comparison of Namak Chub (Squalius namak, Khaefi et al., 2016) in Rivers of Lake Namak Basin of Iran. Res. Zool. Vol. 7, No. 1, pp: 1-6.
12
Pakkasmaa, S. and Piironen, J., 2001. Water velocity shapes juvenile salmonids. Evol. Ecol. Vol. 14, pp: 721-730.
13
Poulet, N.; Berrebi, P.; Crivelli, A.J.; Lek, S. and Argillier, C., 2004. Genetic and morphometric variation in the pikeperch Sander lucioperca of a fragmented delta. Arch. Hydrobiol. Vol. 159, pp: 531-554.
14
Turan, C., 1999. A note on the examination of morphometric differentiation among fish populations: The truss system. Turk. J. Zool. Vol. 23, pp: 259-263.
15
ORIGINAL_ARTICLE
اثر عصاره سیر (Allium sativum) بر بازماندگی، شاخص های رشد، خونی و ترکیب لاشه در ماهی اسکار (Astronotus ocellatus)
در این مطالعه به بررسی اثر عصاره سیر در میزان بازماندگی، رشد، ترکیب لاشه و شاخصهای خونی ماهی اسکار Astronotus ocellatus پرداخته شده است. بدین منظور تعداد 300 قطعه ماهی اسکار (وزن اولیه 0/36±8/37 گرم) در چهار تیمار توزیع شدند و هر تیمار با یک جیره خوراکی شامل بدون عصاره سیر، 0/5 %، 1/5 % و 2/5 % عصاره سیر تغذیه شد. طول دوره آزمایش 8 هفته بود و سپس نمونه برداری صورت گرفت و پارامترهای موردنظر براساس روش های استاندارد اندازه گیریگردید. براساس نتایج به دست آمده شاخص های رشد مانند افزایش وزن (%)، SGR و FCR در ماهیان تغذیه شده با عصاره سیر بهبود یافت. پروتئین خام تنها در ماهیان تغذیه شده با 1/5 درصد عصاره سیر افزایش یافت در حالی که در همین تیمار لیپید خام کاهش یافت. هموگلوبین (Hb) و هماتوکریت (PCV) در تیمارهای تغذیه شده با عصاره سیر افزایش پیدا کرد و تعداد گلبول های قرمز (RBC) در تیمار 1/5 % افزایش معنی داری نسبت به دیگر تیمارها داشت. نتایج مطالعه بیانگر این است که عصاره سیر اثرات مفیدی بر بازماندگی، شاخص های رشد، ترکیب لاشه و شاخص های خونی در ماهیان اسکار دارد و بهترین مقادیر در تیمار 1/5 % عصاره سیر مشاهده شد.
http://www.aejournal.ir/article_69487_e319a23191ad7c9632970f6f5ee0e6af.pdf
2018-09-22
161
168
عصاره سیر
بازماندگی
رشد
خون شناسی
ماهی اسکار
نگار
قطب الدین
ghotbeddiny2005@gmail.com
1
گروه شیلات، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
علی
سقایی
alisaghaei1366@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات خوزستان، اهواز، ایران
AUTHOR
میلاد
منیعات
maniatmilad@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، خرمشهر، ایران
AUTHOR
زهره
قطب الدین
z,ghotbodin@ecu.ac.ir
4
گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
تنگستانی، ر.؛ علیزاده دوغیکلایی، ا.؛ ابراهیمی، ع. و زارع، پ.، 1389. اثر اسانس سیر بر شاخص های هماتولوژیک فیل ماهیان جوان پرورشی. مجله تحقیقات دامپزشکی، دوره 66، شماره3، صفحات 209 تا 216.
1
صمدی،ل.،1391. اثرات عصاره سیر (Allium sativum) بر شاخص های رشد و پارامترهای همولنف میگوی پا سفید غربی (Litopenaeus vannamei)، پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر.
2
Abd El Hakim, N.F.; Ahmad, M.H.; Azab, E.S.; Lashien, M.S. and Baghdady, E.S., 2010. Response of Nile tilapia, Oreochromis niloticus to diets supplemented with different levels of fennel seeds meal (Foeniculum vulgare). Abbassa International Journal of Aquaculture. Vol. 3, pp: 215-230.
3
Agatha, A.D., 2012. the effect of Garlic (Allium sativum) on growth and Hematological parameters of Clarias gariepinus. sustainable Agriculture Research. Vol. 1, No. 2, pp: 222-228.
4
Ahmad, M.H. and Abdel-Tawwab, M., 2011. The use of caraway seed meal as a feed additive in fish diets: Growth performance, feed utilization, and whole-body composition of Nile tilapia, Oreochromis niloticus (L.) fingerlings. Aquaculture. Vol. 314, No. 1, pp: 110-114.
5
Akbary, P. and Shahraki, N., 2016. Effect of Padina atraulis extract on growth, feed, fatty acids profile and carcass composition in Mugil cephalus Linnaeus, 1758. Iranian fisheries sceince journal. Vol. 25, No. 2, pp: 161-170.
6
Aly, S.M. and Mohamed, M.F., 2010. Echinacea purpurea and Allium sativum as immunostimulants in fish culture using Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition. Vol. 94, No. 5, pp: 31-39.
7
Amagase, H. and Milner, J.A., 1993. Impact of various sources of garlic and their constituents on 7, 12-dimethylbenz [α] anthracene binding to mammary cell DNA. Carcinogenesis. Vol. 14, No. 8, pp: 1627-1631.
8
Ashley, P.J., 2007. Fish welfare: current issues in aquaculture. Applied Animal Behaviour Science. Vol. 104, No. 3, pp: 199-235.
9
Bagni, M.; Romano, N.; Finoia, M.G.; Abelli, L.; Scapigliati, G.; Tiscar, P.G. and Marino, G., 2005. Short-and long-term effects of a dietary yeast β-glucan (Macrogard) and alginic acid (Ergosan) preparation on immune response in sea bass (Dicentrarchus labrax). Fish & Shellfish Immunology. Vol. 18, No. 4, pp: 311-325.
10
Block, E., 1992. The organosulfur chemistry of the genus Allium–implications for the organic chemistry of sulfur. Angewandte Chemie International Edition in English. Vol. 31, No. 9, pp: 1135-1178.
11
Blumenthal, M.; Goldberg, A. and Brinckmann, J., 2000. Herbal medicine Integrative medicine communications. Austin. Vol. 8, 401 p.
12
Breyer, K.E.; Getchell, R.G.; Cornwell, E.R.; Wooster, G.A.; Ketola, H.G. and Bowser, P.R., 2015. Efficacy of an Extract from Garlic, Allium sativum, Against Infection with the Furunculosis Bacterium, Aeromonas salmonicida, in Rainbow Trout, Oncorhynchus mykiss. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 46, No. 3, pp: 273-282.
13
Cabello, F.C., 2006. Heavy use of prophylactic antibiotics in aquaculture: a growing problem for human and animal health and for the environment. Environmental Microbiology. Vol. 8, No. 7, pp: 1137-1144.
14
Chakraborty, S.B. and Hancz, C., 2011. Application of phytochemicals as immunostimulant, antipathogenic and antistress agents in finfish culture. Reviews in Aquaculture. Vol. 3, No. 3, pp: 103-119.
15
Citarasu, T., 2010. Herbal biomedicines: a new opportunity for aquaculture industry. Aquaculture International. Vol. 18, No. 3, pp: 403-414.
16
Diab, A.S.; Aly, S.M.; John, G.; Abde-Hadi, Y. and Mohammed, M.F., 2008. effect of garlic, black seed and biogen as immunostimulats on the growth and survival of Nile tilapia, Oreochromis niloticus, and their response to artificial infection with Pseudomonas fluorescens. African journal of Aquatic Science. Vol. 33, No. 1, pp: 63-68.
17
Farahi, A.; Kasiri, M.; Sudagar, M.; Iraei, M.S. and Shahkolaei, M.D., 2010. effect of garlic (Allium sativum) on growth factors, some hematological parameters and body compositions in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss), Aquaculture, Aquarium, Conservation and Legislation international journal of the Bioflux Society. Vol. 3, No. 4, pp: 317-323.
18
Harikrishnan, R.; Balasundaram, C. and Heo, M.S., 2012. Effect of Inonotus obliquus enriched diet on hematology, immune response, and disease protection in kelp grouper, Epinephelus bruneus against Vibrio harveyi. Aquaculture. Vol. 344, pp: 48-53.
19
Harikrishnan, R.; Kim, D.H.; Hong, S.H.; Mariappan, P.; Balasundaram, C. and Heo, M.S., 2012. Non-specific immune response and disease resistance induced by Siegesbeckia glabrescens against Vibrio parahaemolyticus in Epinephelus bruneus. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 33, No. 2, pp: 359-364.
20
Kajita, Y.; Sakai, M.; Atsuta, S. and Kobayashi, M., 1990. The immunomodulatory effects of levamisole on rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Fish Pathology. Vol. 25, No. 2, pp: 93-98.
21
Lee, D.H.; Ra, C.S.; Song, Y.H.; Sung, K.I. and Kim, J.D., 2012. Effects of dietary garlic extract on growth, feed utilization and whole body composition of juvenile sterlet sturgeon (Acipenser ruthenus). Asian-Australasian Journal of Animal Sciences. Vol. 25, No. 4, pp: 577-583.
22
Lee, S.; Najiah, M.; Wendy, W. and Nadirah, M., 2009. Chemical composition and antimicrobial activity of the essential oil of Syzygium aromaticum flower bud (Clove) against fish systemic bacteria isolated from aquaculture sites. Frontiers of Agriculture in China. Vol. 3 No. 3, pp: 332-336.
23
Logambal, S.M.; Venkatalakshmi, S. and Michael, R.D., 2000. Immunostimulatory effect of leaf extract of Ocimum sanctum Linn. in Oreochromis mossambicus (Peters). Hydrobiologia. Vol. 430, No. 1-3, pp: 113-120.
24
Makkar, H.P.S.; Francis, G. and Becker, K., 2007. Bioactivity of phytochemicals in some lesser-known plants and their effects and potential applications in livestock and aquaculture production systems. Vol. 1, No. 9, pp:1371-1391.
25
Maniat, M., Ghotbeddin, N. and Ghatrami, E.R., 2014. Effect of Garlic on Growth Performance and Body Composition of Benni Fish (Mesopotamichthys sharpeyi). International Journal of Biosciences (IJB). Vol. 5, No. 4, pp: 269-277.
26
Miranda, C.D. and Zemelman, R., 2002. Antimicrobial multiresistance in bacteria isolated from freshwater Chilean salmon farms. Science of the Total Environment. Vol. 293, No. 1, pp: 207-218.
27
Mohapatra, S.; Chakraborty, T.; Kumar, V.; DeBoeck, G. and Mohanta, K.N., 2013. Aquaculture and stress management: a review of probiotic intervention. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition. Vol. 97, No. 3, pp: 405-430.
28
Naylor, R. L.; Goldburg, R. J.; Primavera, J. H.; Kautsky, N.; Beveridge, M.C.M.; Clay, J. and Troell, M., 2000. Effect of aquaculture on world fish supplies. Nature. Vol. 405, No. 6790, pp: 1017-1024.
29
Nya, E.J. and Austin, B., 2009. Use of garlic, Allium sativum, to control Aeromonas hydrophila infection in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Journal of Fish Diseases. Vol. 32, No. 11, pp: 963-970.
30
Nya, E.J. and Austin, B., 2011. Development of immunity in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum) to Aeromonas hydrophila after the dietary application of garlic. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 30, No. 3, pp: 845-850.
31
Olusola, S.E.; Emikpe, B.O. and Olaifa, F.E., 2013. The potentials of medicinal plant extracts as bio antimicrobials in aquaculture. International Journal of Medicinal and Aromatic Plants. Vol. 3, No. 3, pp: 404-412.
32
Panigrahi, A. and Azad, I.S., 2007. Microbial intervention for better fish health in aquaculture: the Indian scenario. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 33, No.4, pp: 429-440.
33
Pasnik, D.J.; Evans, J.J.; Panangala, V.S.; Klesius, P.H.; Shelby, R.A. and Shoemaker, C.A., 2005. Antigenicity of Streptococcus agalactiae extracellular products and vaccine efficacy. Journal of Fish Diseases. Vol. 28, No. 4, pp: 205-212.
34
Pavaraj, M.; Balasubramanian, V.; Baskaran, S. and Ramasamy, P., 2011. Development of immunity by extract of medicinal plant Ocimum sanctum on common carp Cyprinus carpio (L.). Research journal of immunology. Vol. 4, No. 1, pp:12-18.
35
Platel, K. and Srinivasan, K., 2004. Digestive stimulant action of spices: A myth or reality, Iranian Journal of Medical Research. Vol. 119, pp: 167-179.
36
Pour, F.; Maniat, M.; Vahedasl, A. and Ghayem, SH., 2014. enhancement of growth performance and body composition in molly fish (Poecilia sphenpos) associated with dietary intake of garlic (Allium sativum). international journal of Biosciences. Vol. 5, No. 8, pp: 115-121.
37
Qiu, X.C.; Zhou, H.Q.; Yokoyama, M. and Liu, X.G., 2003. The effects of dietary Chinese herb additives on biochemical compositions in the muscle of Allogynogenetic crucian carp. Journal of Shanghai Fisheries University (China). Vol. 12, pp: 24-28.
38
Quesada, S.P.; Paschoal, J.A.R. and Reyes, F.G.R., 2013. Considerations on the aquaculture development and on the use of veterinary drugs: special issue for fluoroquinolonea review. Journal of Food Science. Vol. 78, No. 9, pp: R1321-R1333.
39
Raa, J.; Roerstad, G.; Engstad, R. and Robertsen, B., 1992. The use of immunostimulants to increase resistance of aquatic organisms to microbial infections. Diseases in Asian Aquaculture. Vol. 1, pp:39-50.
40
Ranzani-Paiva, M.J.T.; Ishikawa, C.M.; Eiras, A.C. das and Silveira, V.R.da., 2004. Effects of an experimental challenge with Mycobacterium marinum on the blood parameters of Nile tilapia, Oreochromis niloticus (Linnaeus, 1757). Brazilian Archives of Biology and Technology. Vol. 47, No. 6, pp: 945-953.
41
Rico, A.; Phu, T.M.; Satapornvanit, K.; Min, J.; Shahabuddin, A.M.; Henriksson, P.J.G. and Van den Brink, P.J., 2013. Use of veterinary medicines, feed additives and probiotics in four major internationally traded aquaculture species farmed in Asia. Aquaculture. Vol. 412, pp: 231-243.
42
Sahu, S.; Das, B.K.; Mishra, B.K.; Pradhan, J. and Sarangi, N., 2007. Effect of Allium sativum on the immunity and survival of Labeo rohita infected with Aeromonas hydrophila. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 23, No. 1, pp: 80-86.
43
Sakai, M., 1999. Current research status of fish immunostimulants. Aquaculture. Vol. 172, No. 1, pp: 63-92.
44
Sandnes, K.; Lie, Ø. and Waagbø, R., 1988. Normal ranges of some blood chemistry parameters in adult farmed Atlantic salmon, Salmo salar. Journal of Fish Biology. Vol. 32, No. 1, pp: 129-136.
45
Seyfried, E.E.; Newton, R.J.; Rubert, K.F.; Pedersen, J.A. and McMahon, K.D., 2010. Occurrence of tetracycline resistance genes in aquaculture facilities with varying use of oxytetracycline. Microbial Ecology. Vol. 59, No. 4, pp: 799-807.
46
Shalaby, A.M.; Khattab, Y.A. and Abdel Rahman, A.M., 2006. Effects of garlic (Allium sativum) and chloramphenicol on growth performance, physiological parameters and survival of Nile Tilapia (Oreochromis niloticus). Journal of Venomous Animals and Toxins Including Tropical Diseases. Vol. 12, No. 2, pp: 172-201.
47
Sivaram, V.; Babu, M.M.; Immanuel, G.; Murugadass, S.; Citarasu, T. and Marian, M.P., 2004. Growth and immune response of juvenile greasy groupers (Epinephelus tauvina) fed with herbal antibacterial active principle supplemented diets against Vibrio harveyi infections. Aquaculture. Vol. 237, No. 1, pp: 9-20.
48
Takaoka, O.; Ji, S.; Ishimaru, K.; Lee, S.; Jeong, G.; Ito, J. and Takii, K., 2011. Effect of rotifer enrichment with herbal extracts on growth and resistance of red sea bream, Pagrus major (Temminck & Schlegel) larvae against Vibrio anguillarum. Aquaculture Research. Vol. 42, No. 12, pp: 1824-1829.
49
Talpur, A.D. and Ikhwanuddin, M., 2012. Dietary effects of garlic (Allium sativum) on haemato-immunological parameters, survival, growth, and disease resistance against Vibrio harveyi infection in Asian sea bass, Lates calcarifer (Bloch). Aquaculture. Vol. 364, pp: 6-12.
50
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر نسبت های مختلف کربن- نیتروژن در سیستم پرورش متراکم بایوفلاک بر شاخص های رشد و سلامت ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio)
فنآوری بایوفلاک سیستمی است که با تنظیم نسبت کربن و نیتروژن درون آب و افزایش تراکم میکروارگانیزمهای هتروتروف برای پیشبرد منافع پرورشدهنده استفاده میشود. در این تحقیق اثر نسبتهای مختلف کربن به ازت در تکنولوژی پرورش متراکم بایوفلاک بر شاخصهای رشد و برخی شاخصهای آسایش ماهی کپور معمولی ارزیابی گردید. به این منظور تعداد 420 عدد بچه ماهی کپور معمولی با وزن متوسط (5/9±40)گرم به چهار تیمار در سه تکرار تقسیم گردیدند: تیمار اول، دوم و سوم بهترتیب به سیستم بایوفلاک با نسبتهای کربن به ازت 1:15، 1:20 و 1:25 اختصاص داده شد، و تیمار چهارم تیمار شاهد بود. ماهیها به مدت 90 روز پرورش داده شدند و به فواصل یکماهه زیستسنجی و نمونهگیری انجام گرفت. شاخصهای رشد و برخی شاخصهای سلامت ماهی شامل: خصوصیات ظاهری شامل رنگ ماهی، آلودگی انگلی و قارچی، بدشکلی ها، خصوصیات رفتاری (تنفسی، اشتها و نوع شنا) و ساختارهای بافتی آبشش، کبد، کلیه و پوست پرداخته شد. نتایج نشان دادند که شاخصهای رشد در تیمارهای بایوفلاک به طور معنیداری بهتر از تیمار شاهد بود ( 0/05>p). هرچند که شاخصهای رشد مورد بررسی در بین سه تیمارهای بایوفلاک تفاوت معنیداری نداشتند. در بین شاخصهای سلامت ماهی مورد بررسی نیزتغییرات قابل ملاحظهای در بررسیهای فوق مشاهده نشد و ماهیان در این شرایط توانستند با سلامت نسبی و قابل قبولی پرورش یابند و هیچگونه ضایعه بافتی و تکیاختهای بیماریزایی در مطالعات میکروسکوپی مشاهده نشد. به عنوان نتیجهگیری کلی می توان سیستم پرورش متراکم با فنآوری بایوفلاک را برای برخی گونه ها ازجمله کپور معمولی مناسب دانست.
http://www.aejournal.ir/article_69488_7898f9665cad00c32d538233ffe6b63c.pdf
2018-06-22
169
170
بایوفلاک
کپورمعمولی
سیستم متراکم
بافتشناسی
سلامت ماهی
محمدمهدی
حق پرست رادمرد
haghparast_radmard@yahoo.com
1
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز
LEAD_AUTHOR
مجتبی
علیشاهی
alishahimoj@gmail.com
2
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز
AUTHOR
مسعود
قربانپور
m.ghorbanpoor@scu.ac.ir
3
گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز
AUTHOR
علی
شهریاری
alishhrr@yahoo.com
4
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز
AUTHOR
Algers, B.; Blokhuis, H.J. and Broom, D.M., 2008. Animal welfare aspects of husbandry systems for farmed fish Carp. EFSA journal. Vol. 843, pp: 1-28.
1
Algers, B.; Blokhuis, H.J.; Bøtner, A.; Broom, D.M.; Costa, P.; Domingo, M.; Greiner, M.; Hartung, J.; Koenen, F.; Müller-Graf, C. and Morton, D.B., 2009. Scientific opinion of the panel on animal health and welfare on a request from European Commission on general approach to fish welfare and the concept of sentience in fish. The European Food and Safety Authority Journal. Vol. 954, pp: .1-12.
2
Azim, M.E.; Little, D.C. and Bron, J.E., 2008. Microbial protein production in activated suspension tanks manipulating C: N ratio in feed and the implications for fish culture. Bioresource Technology. Vol. 99, pp: 3590-3599.
3
Avnimelech, Y., 1999. Carbon/nitrogen ratio as a control element in aquaculture systems. Aquaculture. Vol. 176, pp: 227-235.
4
Anand, P.S.; Kohli, M.P.S.; Kumar, S.; Sundaray, J.K.; Roy, S.D.; Venkateshwarlu, G.; Sinha, A. and Pailan, G.H., 2014. Effect of dietary supplementation of biofloc on growth performance and digestive enzyme activities in Penaeus monodon. Aquaculture. Vol. 418, pp:108-115.
5
APHA. 1998. Standard Methods for the Examination of the Water and Wastewater, 22nd edn. American Public Health Association, Washington, DC.
6
Avnimelech, Y., 2007. Feeding with microbial flocs by tilapia in minimal discharge bioflocs technology ponds. Aquaculture. Vol. 264, pp: 140-147.
7
Bagni, M.; Civitareale, C.; Priori, A.; Ballerini, A.; Finoia, M.; Brambilla, G. and Marino, G., 2007. Preslaughter crowding stress and killing procedures affecting quality and welfare in sea bass (Dicentrarchus labrax) and sea bream (Sparus aurata). Aquaculture. Vol. 263, pp: 52-60.
8
Bucke, D.A.V.I.D., 1972. Some histological techniques applicable to fish tissues. In Disease of Fish. Proceeding of Symposium. Vol. 30, pp: 257-301.
9
Caballero, M.J.; Izquierdo, M.S.; Kjørsvik, E.; Montero, D.; Socorro, J.; Fernández, A.J. and Rosenlund, G., 2003. Morphological aspects of intestinal cells from gilthead seabream (Sparus aurata) fed diets containing different lipid sources. Aquaculture. Vol. 225, pp: 325-340.
10
Craig, S. and Helfrich, L.A., 2002. Understanding Fish Nutrition, Feeds and Feeding (Publication 420–256). Virginia Cooperative Extension, Yorktown (Virginia). 4 p.
11
Chavan, V.R. and Muley, D.V., 2014. Effect of heavy metals on liver and gill of fish Cirrhinus mrigala. Int. J. Curr. Microbiol. App. Sci. Vol. 3, No. 5, pp: 277-288.
12
Cengiz, E.I., 2006. Gill and kidney histopathology in the freshwater fish Cyprinus carpio after acute exposure to deltamethrin. Environmental Toxicology and Pharmacology. Vol. 22, No. 2, pp: 200-204.
13
De Silva, S.S. and Anderson, T., 1995. Fish Nutrition in aquaculture. London, UK: Chapman and Hall.
14
Dutta, H.M.; Adhikari, S.; Singh, N.K.; Roy, P.K. and Munshi, J.S.D., 1993. Histopathological changes induced by malathion in the liver of a freshwater catfish, Heteropneustes fossilis (Bloch). Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 51, No. 6, pp: 895-900.
15
Erickson, R.J., 1985. An evaluation of mathematical models for the effects of pH and temperature on ammonia toxicity to aquatic organisms. Water Research. Vol. 19, No. 8, pp: 1047-1058.
16
Emerenciano, M.; Ballester, E.L.C.; Cavalli, R.O. and Wasielesky, W., 2013. Effect of biofloc technology (BFT) on the early postlarval stage of pink shrimp Farfantepenaeus paulensis: growth performance, floc composition and salinity stress tolerance. Aquac Int. Vol. 19, pp: 891-901.
17
Hargreaves, J.A., 2006. Photosynthetic suspended-growth systems in aquaculture. Aquacultural Engineering. Vol. 34, pp: 344-363.
18
Hargreaves, J.A., 2013. Biofloc Production System for Aquaculture. Southern RegionalAquaculture Center (SRAC) Publication No. 4503.
19
Handy, R.D. and Depledge, M.H., 1999. Physiological responses: their measurements and use as environmental biomarkers in ecotoxicology. Ecotoxicology. Vol. 8, pp: 329-349.
20
Heidarieh, M.; Mirvaghefi, A.R.; Akbari, M.; Farahmand, H.; Sheikhzadeh, N.; Shahbazfar, A.A. and Behgar, M., 2012. Effect of dietary Ergosan on growth performance, digestive enzymes, intestinal histology, hematological parameters and body composition of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Fish Physiol. Biochem.
21
Doi 10.1007/s10695-012-9602-8.
22
Hari, B.; Kurup, B.M.; Varghese, J.T.; Schrama, J.W. and Verdegem, M.C.J., 2006. The effect of carbohydrate addition on water quality and the nitrogen budget in extensive shrimp culture systems. Aquaculture. Vol. 252, No. 2, pp: 248-263.
23
Ju, Z.Y.; Forster, I.; Conquest, L.; Dominy, W.; Kuo, W.C. and David Horgen, F., 2008. Determination of microbial community structures of shrimp floc cultures by biomarkers and analysis of floc amino acid profiles. Aquaculture Research. Vol. 39, No. 2, pp: 118-133.
24
Kristiansen, T.S.; Ferno, A.; Holm, J.C.; Trivitera, L.;Bakke, S. and Fosseidengen, J.E., 2004. Swimming behaviour as an indicator of low growth rate and impaired welfare in Atlantic halibut (Hippoglossushippoglossus L.) reared at three stocking densities. Aquaculture. Vol. 230, pp: 137-151.
25
Kramer, D.L., 1987. Dissolved oxygen and fish behaviour. Environ. Biol. Fish. Vol. 18, pp: 81-92.
26
Kuhn, D.D.; Lawrence, A.L.; Boardman, G.D.; Patnaik, S.; Marsh, L. and Flick, G.J., 2010. Evaluation of two types of bioflocs derived from biological treatment of fish effluent as feed ingredients for Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei. Aquaculture. Vol. 303, No. 1, pp: 28-33.
27
Luo, G.; Gao, Q.; Wang, C.; Liu, W.; Sun, D.; Li, L. and Tan, H., 2014. Growth, digestive activity, welfare, and partial cost-effectiveness of genetically improved farmed tilapia (Oreochromis niloticus) cultured in a recirculating aquaculture system and an indoor biofloc system. Aquaculture. Vol. 422, pp: 1-7.
28
MacIntyre, C.M., 2008. Water quality and welfare assessment on United Kingdom trout farms. Chapter 2. Influences of water quality on the welfare of farmed rainbow trout. PhD thesis. Institute of Aquaculture, University of Stirling, UK.
29
Morton, D.B., 1990. Guidelines on the recognition of pain, distress and discomfort in experimentalanimals. Europ. J. Pharmacol. Vol. 183, pp: 1583-1590.
30
Mettam, J.J.; Oulton, L.J.; McCrohan, C.R. and Sneddon, L.U., 2011. The efficacy of three types of analgesic drugs in reducing pain in the rainbow trout, Oncorhynchus mykiss. Applied Animal Behaviour Science. Vol. 133, No. 3, pp: 265-274.
31
Morton, A.B., 1990. A quantitative comparison of the behaviour of resident and transient forms of the killer whale off the central British Columbia coast.Reports of the International Whaling Commission Special. Vol. 12,
32
pp: 245-248.
33
McKim, J.M. and Erickson, R.J., 1991. Environmental impacts on the physiological mechanisms controlling xenobiotic transfer across fish gills. Physiological zoology. Vol. 64, No. 1, pp: 39-67.
34
Mohamed, M.E., 2010. The effect of microbial biofloc on water quality, survival and growth of the green tiger shrimp (Penaeus semisulcatus) fed with different crude protein levels. Journal of the Arabian Aquaculture Society. Vol. 5, No. 2, pp: 119-142
35
Noble, C.; Jones, H.A.C.; Damsgård, B.; Flood, M.J.; Midling, K.Ø.; Roque, A.; Sæther, B.S. and Cottee,
36
S.Y., 2012. Injuries and deformities in fish: their potential impacts upon aquacultural production and welfare. Fish physiology and biochemistry. Vol. 38, No. 1, pp: 61-83.
37
Najdgerami, E.H.; Bakhshi, F. and Lakani, F.B., 2015. Effects of biofloc on growth performance, digestive enzyme activities and liver histology of common carp (Cyprinus carpio L.) fingerlings in zero-water exchange system. Fish physiol biochem. Vol. 10695, No. 15, pp: 151-159.
38
Ostaszewska, T.; Dabrowski, K.; Czuminska, K.; Olech, W. and Olejniczak, M., 2005. Rearing of pikeperch larvae using formulated diets-first success with starter feeds. Aquaculture Research. Vol. 36, pp: 1167-1176.
39
Ottesen, O.H. and Olafsen, J.A., 2000. Effects on survival and mucous cell proliferation of Atlantic halibut, Hippoglossus hippoglossus L., larvae following microflora manipulation. Aquaculture. Vol. 187, pp: 225-228.
40
Doi: 10.1016/S0044-8486(00)00314-8.
41
Odegard, J.; Olesen, I.; Dixon, P.; Jeney, Z.; Nielsen, H.M.; Way, K.; Joiner, C.; Jeney, G.; Ardó, L.; Rónyai, A. and Gjerde, B., 2010. Genetic analysis of common carp (Cyprinus carpio) strains. II: Resistance to koi herpesvirus and Aeromonas hydrophila and their relationship with pond survival. Aquaculture. Vol. 304, No. 1, pp: 7-13.
42
Patriche, T.; Patriche, N.; Bocioc, E. and Coada, M.T., 2011. Serum biochemical parameters of farmed carp (Cyprinus carpio). Aquaculture, Aquarium, Conservation & Legislation-International Journal of the Bioflux Society (AACL Bioflux). Vol. 4, No. 2.
43
Pan, L.Q. and Xu, W.J., 2012. Effects of bioflocs on growth performance, digestive enzyme activity and body composition of juvenile Litopenaeus vannamei in zero-water exchange tanks manipulating C/N ratio in feed. Aquaculture. Vol. 356, pp: 147-152.
44
Poleksić, V.; Karan, V.; Elezović, I. and Nešković, N., 1995. Estimation of harmful effects of pesticides on fish: biochemical and histopathological approach. I Regional Symposium: Chemistry and the Environment, Vrnjačka Banja, Serbian Chemical Society, Proceedings. Vol. 1, pp: 487-490.
45
Poleksić, V.; Rašković, B.; Marković, Z.; Dulić, Z.; Stanković, M.; Živić, I. and Lakić, N., 2007. Effects of different dietary protein sources on intestine and liver morphology of carp yearlings. Proceedings of the 3rd Serbian Congress for Microscopy. Belgrade, Serbia, Serbian Microscopy Society. pp: 237-238.
46
Ruyet, J.P.; Labbe, L.; Bayon, N.L.; Severe, A. and Roux, A.L., 2008. Combined effects of water quality and stocking density on welfare and growth of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquat. Vol. 21, pp: 185-195.
47
Rašković B.; Poleksić V.; Živić I. and Spasić, M., 2010. Histology of carp (Cyprinus carpio, L.) gills and pond water quality in semiintensive production, Bulg. J. Agric. Sci. Vol. 16, pp: 253-262.
48
Raskovic, B.; Jaric, I.; Koko, V.; Spasic, M.; Dulic, Z. and Markovic, Z., 2013. Histopathological indicators: a useful fish health monitoring tool in common carp (Cyprinus carpio Linnaeus, 1758) culture. J.Biol. Vol. 8, pp: 975-985.
49
Relić, R.; Ćirić, M.; Radenković-Damnjanović, B. and Vučinić, M., 2009. Kvalitet vode i dobrobit riba. Zbornik radova XX Savetovanja “Dezinfekcija, dezinsekcija i deratizacija u zaštiti zdravlja životinja i ljudi” sa međunarodnim učešćem, Divčibare. pp: 199-206.
50
Relic, R.; Hristov, S.; Poleksic, V. and Markovic, Z., 2009. Establishment of fish stress studies within the Center for fishery and applied hydrobiology at the Faculty of agriculture University of Belgrade. In book of abstracts of the Conference Aquaculture Europe. pp: 269-270.
51
Rankin, J.C. and Bolis, L., 1984. 6 Hormonal Control of Water Movement Across the Gills. Fish physiology. Vol. 10, pp: 177-201.
52
Rodrigues, E.D.L. and Fanta, E., 1998. Liver histopathology of the fish Brachydanio rerio Hamilton Buchman after acute exposure to sublethal levels of the organophosphate Dimethoate 500. Revista Brasileira de Zoologia. Vol. 15, No. 2, pp: 441-450.
53
Segner, H. and Juario, J.V., 1986. Histological observations on the rearing of milkfish, Chanos chanos, fry using different diets. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 2, pp: 162-172.
54
Roberts, R.J., 1989. Fish pathology. Baillière Tindall, London.
55
Svobodova, Z.; Lloyd, R.; Machova, J. and Vykusova, B., 1993. Water quality and fish health. EIFAC Technical Paper. No. 54. Rome, FAO. 59 p.
56
Sutor, H.C. and Huntingford, F.A., 2002. Eye colour in juvenile Atlantic salmon: effects of social status, aggression and foraging success. J. Fish Biol. Vol. 61, pp: 606-614.
57
Strüssmann, C.A. and Takashima, F., 1990. Hepatocyte nuclear size and nutritional condition of larval pejerrey, Odontesthes bonariensis (Cuvier et Valenciennes). Journal of Fish Biology. Vol. 36, pp: 59-65.
58
Sharma, A.; Sharma, K. and Sangotra, R., 2015. Biofloc culture and its utilisation as feed in limited water exchange system for the culture of labeo rohita. Journal of international academic research for multidisciplinary. Vol. 2320, Vol. 5083. pp: 1-9.
59
Souza, D.M.; Martins, Á.C.; Jensen, L., Wasielesky Jr, W., Monserrat, J.M. and Garcia, L.D.O., 2014. Effect of temperature on antioxidant enzymatic activity in the Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei in a BFT (Biofloc technology) system. Marine and Freshwater Behaviour and Physiology. Vol. 47, No. 1, pp: 1-10.
60
Svobodova, Z.; Blahova, J.; Modra, H. and Velíšek, J., 2009. The effect of transport on biochemical and haematological indices of common carp (Cyprinus carpio L.). Czech J Anim Sci. Vol. 54, No. 11, pp: 510-518.
61
Turnbull, J.F.; Bell, A.; Adams, C.E.; Bron, J. and Huntingford, F.A., 2005. Stocking density and welfare of cage farmed Atlantic salmon: application of a multivariate analysis. Aquaculture. Vol. 243, pp: 121-132.
62
Takashima, F. and Hibiya, T., 1982. An atlas of fish histology: normal and pathological features. Kodansha, distributed by Fischer, G., Tokyo.
63
Tacon, A.G.J., 1992. Nutritional fish pathology: morphological signs of nutrient deficiency and toxicity in farmed fish. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome.
64
Vis, H.; Oehlenschlager, J.; Kuhlmann,H.; Munkner, W.; Robb, D.H.F. and Schelvis-Smit,A.A.M., 2001. Effect of the Commercial and Experimental Slaughter of Eels (Anguilla Anguilla L.) on Quality and Welfare. In: S.C. Kestin and P.D. Warriss (eds.) Farmed Fish Quality. Fishing News Books, Oxford, UK. pp: 234-248.
65
Verreth, J.; Coppoolse, J. and Segner, H., 1994. The effect of low HUFA-and high HUFA-enriched Artemia, fed at different feeding levels, on growth, survival, tissue fatty acids and liver histology of Clarias gariepinus larvae. Aquaculture. Vol. 126, pp: 137-150.
66
Widanari, A.; Ekasari, J. And Maryam, S., 2012. Evaluation of Biofloc Technology Application on Water Quality and Production Performance of Red Tilapia Oreochromis sp Cultured at Different Stocking Densities. Journal of Biosciences. Vol. 2, pp: 73-80.
67
Xueqin, J.; Kania, P.W. and Buchmann, K., 2012. Comparative effects of four feed types on white spot disease susceptibility and skin immune parameters in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). J. Fish Dis. Vol. 35, pp: 127-135. doi: 10.1111/j.1365-2761.2011.01329.
68
Yuan, D.; Yi, Y.; Yakupitiyage, A.; Fitzimmons, K. and Diana, J.S., 2010. Effects of addition of red tilapia (Oreochromis spp.) at different densities and sizes on production, water quality and nutrient recovery of intensive culture of white shrimp (Litopenaeus vannamei) in cement tanks. Aquaculture. Vol. 298, No. 3, pp: 226-238.
69
Zhao, P.; Huang, J.; Wang, X.H.; Song, X.L.; Yang, C.H.; Zhang, X.G. and Wang, G.C., 2012. The application of bioflocs technology in high-intensive, zero exchange farming systems of Marsupenaeus japonicus. Aquaculture. Vol. 354, pp: 97-106.
70
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات سن و وزن مولدین ماهی کپور (1758, Cyprinus carpio Linnaeus) صید شده از دریا و مولدین دریایی پرورش یافته در استخرهای خاکی روی برخی خصوصیات تولیدمثلی
در تحقیق حاضر، برخی خصوصیات تولیدمثلی مولدین ماهی کپور صید شده از دریا و مولدین دریایی پرورش یافته در استخرهای خاکی مورد بررسی قرار گرفت و تاثیر سن و وزن این مولدین روی شاخص های تولیدمثلی مانند:: درصد لقاح، تعداد تخم لقاح یافته، تعداد لاروهای نورس، قطر تخم و تعداد تخم به ازای هر گرم در هر دو گروه مولدین ارزیابی شد. نتایج نشان داد وزن و سن مولدین ماده بر درصد لقاح، تعداد تخم لقاح یافته، تعداد لاروهای نورس، قطر تخم و تعداد تخم به ازای هرگرم اثر معنی داری نداشت (0/05<P) ، ولی بر درصد تخم گشایی اثر معنی داری داشت؛ به طوری که در مولدین دریایی درصد تخم گشایی به طور معنی داری بالاتر از مولدین پرورشی بود (0/05>P). هم چنین نوع مولد (دریایی و پرورشی) بر درصد لقاح، تعداد تخم لقاح یافته، تعداد بچه ماهی نورس، قطر تخم، تعداد تخم به ازای هر گرم اثر معنی داری نداشت (0/05<P)، ولی بر درصد تخم گشایی اثر معنی داری را نشان داد (0/01>P)، به طوری که درصد تخم گشایی در مولدین دریایی به طور معنی داری بالاتر از مولدین پرورشی بود. در مجموع با توجه به نتایج، می توان دریافت که سن و وزن مولدین ماده در مقایسه با سن و وزن مولدین نر اثر معنی داری بر درصد تخم گشایی داشته و هم چنین نوع مولد (دریایی و پرورشی) نیز اثر معنی داری بر این پارامترها دارد (0/05>P).
http://www.aejournal.ir/article_69516_c53c984133b7a047dccdbe572ee9922a.pdf
2018-06-22
171
176
مولدین کپور
سن
وزن
ویژگی های تولیدمثلی
کامران
عقیلی
k_aghili33@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری
AUTHOR
سکینه
یگانه
skyeganeh@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم دامی و شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی ساری
LEAD_AUTHOR
کورش
امینی
kourosh_a_ca@yahoo.com
3
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، مرکز تحقیقات ذخایر آبزیان آب های داخلی، گرگان
AUTHOR
ایمانپور، م.ر. و صفری، ر.، 1388. اﺛﺮ ﻣﺮاﺣﻞ رﺳﻴﺪﮔﻲ ﺟﻨﺴﻲ ﺑﺮ ﺑﺮﺧﻲ ﺷﺎﺧﺺﻫﺎی ﮔﻨﺎدی و ﺗﺮﻛﻴﺐ ﺷﻴﻤﻴﺎﻳﻲ ﺑﺎﻓﺖ ﮔﻨﺎد در ﻣﺎﻫﻲ ﻛﭙﻮر درﻳﺎی ﺧﺰر (Cyprinus capio Linnaeus, 1758). ﻣﺠﻠﻪ ﻋﻠﻮم ﻛﺸﺎورزی و ﻣﻨﺎﺑﻊ ﻃﺒﻴﻌﻲ. ﺟﻠﺪ 16، ﺷﻤﺎره 1، صفحات 19 تا 24.
1
حسین زاده صحافی،ه.؛سلطانی،م. وداور،ف.، 1380. زیست شناسی تولیدمثل ماهی شورت Sillago sihamaدر خلیج فارس. مجله علمی شیلات ایران. سال 10، شماره 1، صفحات 37 تا 54.
2
ذبیحی،م.؛پورکاظمی،م.؛کاظمی،ر. وکمالی،ا.، 1384. تعیین زمان تخم ریزی و تغییرات چرخه تولیدمثلی هامون ماهی ((schizothorax zarudnyiبر مبنای شاخص وزنی گناد،شاخص وزنی کبد و شاخص چاقی. مجله علمی شیلات ایران. سال 12، شماره 4، صفحات 41 تا 56.
3
رهنما، س.؛ یلقی، س. و شجیعی، ه.، 1391. بررسی برخی شاخص های زیستی مولدین ماهی کپوردریایی در مرکز تکثیر سیجوال، بندرترکمن. مجله دانشگاه آزاد اسلامی واحد آزادشهر. سال 6، شماره 3، صفحات 111 تا 120.
4
عباسی، ک.؛ اسماعیلی فریدونی، ا.؛ صیادبورانی،م. و رحمانی، ح.، 1395. بررسی ارتباط همآوری ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) تالاب انزلی با طول، وزن و سن مولدین. همایش ملی آبزی پروری و اکوسیستم پایدار. 9-7 مهرماه. صفحات 45 تا 58.
5
عنایت غلامپور، ط. و ایمانپور، م.، 1391. ارتباط میان برخی خصوصیات گنادی، اندازه ماهی و شاخص کبدی طی دوره تولیدمثلی مولدین ماده کپور دریایی (Cyprinus carpio Linnaeus, 1758) در خلیج گرگان. مجله زیست شناسی ایران. دوره 25، شماره 3، صفحات 409 تا 417.
6
غفاری، ط. و فلاحتکار، ب.، 1394. اثر سن بر شاخص های تولیدمثلی ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio). نشریه توسعه آبزی پروری. سال 9، شماره 1، صفحات 67 تا 80.
7
فریدپاک، ف.،1386. دستورالعمل اجرایی تکثیر مصنوعی و پرورش ماهی های گرم آبی. انتشارات علمی آبزیان. 298 صفحه.
8
ندافی،ر.؛مجازی امیری،ب.؛کرمی،م.؛ حسن زاده کیابی،ب. و عبدلی،ا.، 1381. بررسی بعضی ویژگی های زیست شناسی کلمه ترکمنی Ruttilus ruttilus caspius در تالاب گمیشان. مجله علمی شیلات ایران. سال 11، شماره 3، صفحات 103 تا 124.
9
نظری،ر.م.؛عبداللهی،ح.؛مدانلوکردکلایی،م.؛کلانتریان،ح.؛ سهراب نژاد،م.واویسی پور،م.ر.، 1388. اثر اندازه تخمک بر درصد بازماندگی، روند رشد و نمو مراحل پیش لارو و تغذیه آغازین لارو تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus). مجله علمی شیلات ایران. سال 18، شماره 1، صفحات 137تا 150.
10
یلقی،س.،1379. بررسی سن، رشد و تولیدمثل کپوردریایی (Cyprinus carpio) مصب گرگانرود. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 48 صفحه.
11
Aliniya, M.; Khara, H.; Baradaran Noveiri, Sh. and Dadras, H., 2013. Influence of common carp (Cyprinus carpio) Broodstock on reproductive traits and fertilization. Turkish J. of Fish. and Aqua. Sci. Vol. 13, pp: 19-21.
12
Bonislawska, M.; Formickik, K.; Korezelecka-Orkisz, A. and Winncki, A., 2001. Fish egg size variability: Biological significance. Electronic Journal of Polish Agricultural Universities, Fisher. Vol. 4, pp: 1 -10.
13
Bromage, N.R. and Cumaranatunga, P.R.T., 2008. Egg production in the rainbow trout. In Recent advances in aquaculture, eds., J.F. Muir and R.J. Roberts. Croom Helm: London and Sydney. pp: 65-138.
14
Einum, S.; Hendry, A.P. and Fleming, I.A., 2002. Egg size evolution in aquatic environments: does oxygen availability constrain size? Proc R. Soc. Lond. B. Vol. 269, pp: 2325-2330.
15
Fernandes-Delgado, C., 2004. Life history patterns of the common carp, Cyprinus carpio, in the estuary of the Guadalquivir River in southwest Spain. Hydrobiologia. Vol. 206, pp: 19-28.
16
Hendry, A.P. and Day, T., 2003. Revisiting the positive correlation between female size and egg size. Evolutionary Ecol. Res. Vol. 5, pp: 421-429.
17
Lahnsteiner, F., 2000. Morphological, physiological and biochemical parameters characterizing the over ripening of rainbow trout eggs. Fish Physiol and Biochem. Vol. 23, pp: 107-118.
18
Linhart, O.; Kudo, S.; Billard, R.; Slecbta, V. and Mikodina, E.V., 2004. Morphology composition and fertilization of carp eggs: A review. Aqua. Vol. 129, pp: 75-93.
19
Makhdoomi, N. and Agh, N., 2005. Interrelationship between Egg size, Fatty acid profile and growth rate of Huso huso Larvae 5th international symposium on sturgeon. 9-13 May. Ramsar, Iran. pp: 82-84.
20
Mordenti, O.; Roncarati, A.; Dess, A.; Bonaldo, A. and Melotti, P., 2003. Influence of broodstock age on reproductive performance in koi carp (Cyprinus carpio L.). Italian Jour. of Anim. Sci. Vol. 1, pp: 640-642.
21
MousaviGelsefid, S.A., 2001.The study of common carp (Cyprinus carpio) population in Anzali Wetland. M. Sc. Thesis. Faculty of natural resources. Islamic Azad University, Lahidjan Branch, Iran. 108 p.
22
Muller-Belecke, A., 2005. Relations between egg size, reproductive success and growth performance of progeny in isogenic Oreochromis niloticus lines, Aqua. Vol. 247, pp: 127-134.
23
Mylonas, C.C. and Zohar, Y., 2007. Promoting oocyte maturation, ovulation and spawning in farmed fish. In: Babin, P.J., Cerdá, J., Lubzens, E. (Eds.), the Fish Oocyte: From Basic Studies to Biotechnological Applications. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, the Netherlands. pp: 433-470.
24
NACA. 1989. Integrated fish farming in China. NACA Technical Manual 7.I World Food Day Publication of the Network of Aquaculture Centers in Asia and the Pacific. Bangkok. Thailand. 278 p.
25
Pitcher, T.J. and Hart, P.J.B., 2000. Fisheries ecology. Chapman and Ha11L. London. 414P.
26
Zadmajid, V.; Imanpour, M.R.; Shabani, A. and Baharloi, A., 2012. Evaluation of egg production and sex steroid profiles in goldfish (Carassius auratus) during four consecutive seasons. Global Veterinaria. Vol. 9, pp: 367-375.
27
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی فاکتور های رشد، بازماندگی و نسبت جنسی در نسل اول ماهیان دم شمشیری (Xiphophorus helleri) تغذیه شده با عصاره آلوئه ورا (Aloe vera)
گیاه صبر زرد دارویی با نام علمیAloe vera ازجمله گیاهان دارویی با ارزش در دنیا است. در این آزمایش فاکتورهای رشد، بقاء و نسبت جنسی در فرزندان نسل اول ماهیان دم شمشیری تغذیه شده با عصاره آلوئه ورا مورد بررسی قرار گرفت. ماهیان مولد با جیره حاوی سطوح مختلف عصاره پودری آلوئه ورا ۰ (شاهد یا تیمار ۱)، ۲۰ (تیمار ۲)، ۴۰ (تیمار ۳)، ۸۰ (تیمار ۴) و۱۶۰ ( تیمار ۵) میلی گرم بر کیلوگرم جیره غذایی به مدت 14 هفته تغذیه شدند. در پایان آزمایش نتایج نشان داد که بیش ترین میزان میانگین تعداد لارو به مولد در تیمار ۴ و کم ترین میزان میانگین تعداد لارو به مولد در تیمار ا، 2 و 5 مشاهده شد. بین تیمارهای 3 و 4 اختلاف معنی داری مشاهده نشد. بیش ترین و کم ترین میزان نسبت جنسی ماده به نر به ترتیب در تیمارهای 5 و 3 مشاهده شد. نتایج نشان داد که استفاده از دوز 40 و 80 میلی گرم عصاره پودری آلوئه ورا بر کیلوگرم جیره در مولدین ماده باعث افزایش تعداد لاروهای نر دم شمشیری حاصله از تکثیر شده است.
http://www.aejournal.ir/article_69537_7739b96e1ec8726394b19795b3f67f25.pdf
2018-06-22
177
182
دم شمشیری
آلوئه ورا
فاکتورهای رشد و بقاء
تولیدمثلی
نیلوفر
ماهیگیر
niloufar.mahigir@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: ۱۵۷۳۹-۴۹۱۳۸، گرگان، ایران
AUTHOR
محمد
سوداگر
sudagar_m@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: ۱۵۷۳۹-۴۹۱۳۸، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
عباسعلی
حاجی بگلو
alihajibeglou@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: ۱۵۷۳۹-۴۹۱۳۸، گرگان، ایران
AUTHOR
شهرام
دادگر
shdadgar@yahoo.com
4
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، تهران، صندوق پستی: 149-14965
AUTHOR
امینی، م.، ۱۳۸۵. تکثیر و پرورش ماهیان زینتی. انتشارات نقش مهر. ۲۱۴ صفحه.
1
پورفرید، م.؛ کریمی جشنی، ح. و هوشمند ف.، ۱۳۹۲. تاثیر عصاره هیدروالکلی گیاه آلوئه ورا بر میزان غلظت سرمی هورمون های استروژن و پروژسترون و گنادوتروپین در رت. مجله دانشگاه علوم پزشکی جهرم. دوره 10، شماره 4، صفحات 7 تا 12.
2
حاجی بگلو، ع.ع.، 1389. تأثیر پروبیوتیک پریمالاک و پربیوتیک ایمونووال بر رشد، میزان زندهزایی و نسبت جنسی ماهی دمشمشیری (xiphophorus helleri) و پلاتی (xiphophorus maculatus). پایان نامه کارشناسی ارشد شیلات. دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 87 صفحه.
3
حاجی بگلو، ع.ع. و سوداگر، م.، ۱۳۹۵. بررسی اثر عصاره ریزپوشانی شده گیاه فیکوس بنگهالنسیس (Ficus benghalensis) بر فاکتورهای رشد و تولیدمثلی در ماهیان دمشمشیری (Xiphophorus helleri). فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری. سال 8، شماره ۲، صفحات 249 تا 258.
4
زرجینی، ت. و علیوردی لو، ع.، 1393. اصول نوین پرورش گیاهان دارویی کاربری و نحوه استفاده از آن. تهران، آموزش فنی حرفه ای مزرعه زرین. 271 صفحه.
5
عمادی، ح.، ۱۳۸۸. آکواریوم و تکثیر و پرورش ماهی های آکواریومی آب شیرین. انتشارات نقش مهر. ۱۷۳ صفحه.
6
فرحی، ا. و سوداگر، م.، 1393. اثرات سطوح مختلف پروبیوتیک ایمونوژن جیره غذایی بر شاخص های تولیدمثلی مولدین ماهی آنجل (Pterophyllum scalare) و ارزیابی بقای لاروهای حاصله در مواجهه با تنش افزایش ناگهانی دما. مجله آبزیان زینتی. سال 2، شماره 1، صفحات 1 تا 9.
7
قاسمی پیربلوطی،ع.،1388 . گیاهان دارویی و معطر (شناخت و بررسی اثرات آن ها). انتشارات دانشگاه آزاد اسلامی. 111 صفحه.
8
کدوری، م. و ملازاده، م.، 1392. تولید علمی و عملی گیاهان دارویی (کاشت، داشت، برداشت و خواص درمانی). تهران، انتشارات آموزش و ترویج کشاورزی. 199 صفحه.
9
مظفریان،و.، 1377.فرهنگ نام های گیاهان ایران. چاپ دوم. انتشارات فرهنگ معاصر. ۳۲ صفحه.
10
مهینی، س.، ۱۳۸۸. اسرار ماهیان آکواریوم. انتشارات دریاسر. ۱۹۸ صفحه.
11
والتر، اسجود.؛اسکمپبل، ک.؛ آکلوگ،ا.؛اف استیونس، پ. (ترجمه) سعیدی، ح.، 1382. سیستماتیک گیاهی. جهاد دانشگاهی واحد صنعتی اصفهان. ۲۱۲ صفحه.
12
Amrani, A.; Marti, O.; Gavalda, A.; Giralt, M. and Jolon, T., 1993. Effect of chronic Jolon T. immobilization stress on GH and TSH secretion in the rat, response to hypothalamic regulatory factory. Psychone Uroendocrinology. Vol. 18, No. 5-6, pp: 405-413.
13
Arabshahi-Delouee, S. and Urooj, A., 2007. Antioxidant properties of various solvent extracts of mulberry (Morus indica L.) leaves Food Chem. Vol. 102, pp: 1233-1240.
14
Arthington, A.H., 1989. Diet of Gambusia affinis holbrooki, Xiphophorus helleri, X. maculata and Poecilia reticulata (Pices: Poeciliidae) in streams in southeastern Queensland. Australia. Asian Fisheries Science.Vol.2, pp: 193-212.
15
Benson, K.E. and Basolo, A.L., 2006. Male-male competition and the sword in male swordtails, Xiphophorus hellerii. Animal Behaviour. Vol. 71, pp: 129-134.
16
Cassidy, A.; Bingham, S. and Setchell, KDR., 1994. Biological effects of a diet of soy protein rich in isoflavones on the menstrual cycle of premenopausal women. Am J Clin Nutr. Vol. 60, pp: 333-340.
17
Englund, R.E., 2002. The loss of native biodiversity and continuing nonindigenous species introductions in freshwater estuarine, and wetland communities of Pearl Harbour. Oahu, Hawaiian Islands. Estuaries. Vol.25, pp: 418-430.
18
FAO. 2017. FAO aquaculture newsletter. No. 56. Rome. 64 p.
19
Franck, D.; Klamroth, B.; Taebel-Hellwig, A. and Schartl, M., 1998. Home ranges and satellite tactics of male green swordtails (Xiphophorus helleri) in nature. Behavioural Processes. Vol. 43, pp: 115-123.
20
Ghosh, S.; Sinha, A. and Sahu, C., 2007. Effect of probiotic on reproductive performance in female livebearing ornamental fish. Aquaculture Research. Vol. 38, pp: 518-526.
21
Grisdale-Helland, B.; Helland, S.J. and Gatlin,D.M., 2009. The effects of dietary supplementation with mannanoligosaccharide, fructooligosaccharide or galacto oligosaccharide on the growth and feed utilization of Atlantic salmon (Salmo salar). Aquaculture. Vol. 283, pp: 163-167.
22
Hevroy, E.; Espe, M.; Waagbo, R.; Sandnes, K.; Ruud, M. and Hemre, G.I., 2005. Nutrient utilization in Atlantic salmon (Salmo salar L.) fed increased levels of fish protein hydrolysate during a period of fast growth. Aquaculture Nutrition. Vol. 11, pp: 301-313.
23
Hile, R., 1963. Age and growth of the cisco, Leucichthys artedi (Le Sueur), in the lakes of the north-eastern. highlands. Wisconsin. Bull. U.S. Bur. Fish. Vol. 48, pp: 211-317.
24
Knatur, S., 1995. Pathic handbook of herber formglas. Herbr Research. Publication. Inc.
25
Monticini, P.; 2010. The ornamental fish trade. Globefish Research Programme. Vol. 102.
26
Rani, P.; Immanuel, S. and Kumar, N.R., 2014. Ornamental Fish Exports from India: Performance Competitiveness and Determinants. International Journal of fisheries and Aquatic Studies. Vol. 1, pp: 85-92.
27
Sahu, S.; Das, B.K.; Pradhan, J.; Mohapatra, B.C.; Mishra, B.K. and Niranjan Sarangi, N., 2007. Effect of Magnifera indica kernel as a feed additive on immunity and resistance to Aeromonas hydrophila in Labeo rohita finger lings. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 21, pp: 301-331.
28
Sardar, P.; Abid, M.; Randhawa, H.S. and Prabhakar, S.K., 2009. Effect of dietary lysine and methionine supplementation on growth, nutrient utilization, carcass compositions and haemato-biochemical status in Indian compositions and haemato-biochemical status in Indian diet. Aquaculture Nutrition. Vol. 38, pp: 111-148.
29
Tamaru, C.S.; Cole, B.; Bailey, R.; Brown, C. and Ako, H., 2001. A manual for the commercial production of the swordtail, Xiphophorus hellerii. CTSA Publication No. 128. University of Hawaii Sea Grant Extension Service, Honolulu, Hawaii.
30
Tavolga, W.N., 1949. Embryonic development of the platyfish (Platypoecilus), the swordtail (Xiphophorus) and their hybrids. Ame. museum of natural history. Vol. 94, 4 p.
31
Telefo, P.B.; Moundipa, P.F. and Tchouanguep, F.M., 2004. Inductive effect of the leaf mixture extract of Aloe buettneri, Justicia insularis, Dicliptera verticillata and Hibiscus macranthus on in vitro production of estradiol. J Ethno Pharmacol. Vol. 91, pp: 225-230.
32
Westphal, L.M.; Polan, M.L. and Trant, A.S., 2006. Double-blind, placebo-controlled study of FertilityBlend®: a nutritional supplement for improving fertility in women. Clinical and experimental obstetrics and gynecology. Vol. 4, pp: 205-208.
33
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی امکان پرورش دو گونة ماهی کپور معمولی و کپور نقرهای در فاضلاب شهری تصفیهشده و اثر حضور این دو گونة آبزی بر پارامترهای کیفی فاضلاب (مطالعة موردی: تصفیهخانة فاضلاب مهدیشهر)
استفادة مجدد از آبهای نامتعـارف مانند انواع فاضلاب با رعایت اصول محیط زیـستی از اهمیت زیادی برخوردار است. این تحقیق با هدف امکانسنجی پرورش و بررسی عملکرد رشد و بازماندگی دو گونة ماهی کپور نقرهای (رژیم غذایی فیلترکنندگی) و ماهی کپور معمولی (رژیم غذایی پودهخواری) در غلظتهای مختلف فاضلاب و هم چنین مطالعة اثر حضور این دو گونه بر پارامترهای کیفی فاضلاب شامل BOD، COD، TSS، TDS، نیترات و فسفات در فاز دوم تصفیه خانه فاضلاب شهر مهدی شهر (با روش لجن فعال) در استان سمنان انجام گردید. برای این تحقیق، پنج تیمار غلظتی فاضلاب شامل تیمار شاهد (بدون فاضلاب) و تیمارهای 25، 50، 75 و 100 درصد فاضلاب خروجی از تصفیه خانه با سه تکرار در مخازن 80 لیتری در نظر گرفته شد. در هر مخزن 10 قطعه ماهی کپور معمولی و 10 قطعه ماهی کپور نقرهای با میانگین وزنی 5±30 گرم معرفی شد و در یک دورة یک ماهه، عملکرد رشد و بازماندگی ماهی در تیمارهای مختلف مورد مقایسه قرار گرفت. هم چنبن تغییرات شاخصهای مختلف فاضلاب در تیمار 100 درصد فاضلاب با حضور ماهی و بدون حضور ماهی (شاهد) مورد بررسی قرار گرفت. براساس نتایج بهدست آمده، بیش ترین میزان افزایش وزن (WG) (%18) و ضریب رشد ویژه (SGR) (0/23) مربوط به دو تیمار 75 و 100 درصد فاضلاب بود. هم چنین در تیمار 100 درصد فاضلاب با حضور ماهی نسبت به تیمار شاهد (بدون حضور ماهی) در طول دورة تحقیق، پارامترهای BOD، COD، TSS، نیترات و فسفات در یک روند زمانی بهطور معنیداری (0/05≥P) روند کاهشی نشان دادند، درحالی که این روند برای پارامتر TDS دارای روند افزایشی بود. نتایج به دست آمده نشان داد که فاضلاب تصفیه شدة شهری بدون اختلاط آب نیز قابلیت استفادة مجدد در آبزیپروری گونههای مقاوم به شرایط محیطی مانند گونههای پرورشی خانوادة کپورماهیان (Cyprinidae) را دارد. هم چنین، حضور گونة آبزی با توجه به رژیم غذایی، نقش قابل ملاحظهای در بهبود پارامترهای کیفی قاضلاب دارد.
http://www.aejournal.ir/article_69620_0d77ae73dcb811ac932cf3ee1f09a72f.pdf
2018-06-22
183
188
ضریب رشد ویژه
فسفات
نیترات
Cyprinus carpio
Hypophthalmichthys molitrix
نسرین
نادری راد
mnaderi4195@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکدة محیط زیست و انرژی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات تهران
AUTHOR
کامران
رضایی توابع
krtavabe@ut.ac.ir
2
گروه شیلات، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی کرج، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، صندوق پستی: 4111
LEAD_AUTHOR
سید مهدی
برقعی
mborghei@sharif.edu
3
دانشکدة مهندسی شیمی و نفت، دانشگاه صنعتی شریف، تهران
AUTHOR
Agharokh, A., 2008. Study of flowers and ornamental fishes integrated culture possibility by aquaponics method in Bushehr wastewater treatment plant sewage at pilot scale. Water and Wastewater Journal. Vol. 19, pp: 53-47.
1
Ahmadi, M.; Karami, M. and Kazemi, R., 2001. Determination of Biomass and production estimation in Aghosht and Kordan rivers. Iran Natural Resources Journal. Vol. 53, pp: 20-31.
2
Al-Turki, A.I., 2010. Assessment of effluent quality of tertiary wastewater treatment plant at Buraidah city and its reuse in irrigation. J of Applied Scie. Vol. 10, pp: 1723-1731.
3
Asharitabar, N.; Zahedimovahed, H.; Mohaghegh, M. and Bakhtiari, H., 2010. Feasibility of wastewater quality optimization by aquatic animals. Environment Journal. Vol. 48, pp: 60-68.
4
Barton, B.A., 2002. Stress in Fishes: A diversity of responses with particular reference to changes in circulating corticosteroids. Integrative and Comparative Biology. Vol. 42, pp: 517-525.
5
Birgit, H.; Michael, R.; Van den, H.; Bettina C. and Hitzfeld, M., 2004. Effects of treated sewage effluent on immune function in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Aquatic Toxicology. Vol. 70, pp: 345-355.
6
Bunting, S.W., 2004. Wastewater aquaculture: perpetuating vulnerability or opportunity to enhance poor livelihoods. Aquat Resour Culture Develop. Vol. 1, pp: 51-75.
7
Corbitt, R.A., 1999. Standard handbook of environmental Engineering", 2nd Ed., McGraw-Hill, New York, 328 p.
8
Erfanmanesh, M. and Afiuni, M., 2002, Environmental Pollution of Water, Soil and Air. Arkan press, Isfahan. 324 p.
9
Esmaeilisari, A., 2004. Contaminants, Health and Environmental Standards. NaghsheMehr Press, Tehran. 248 p.
10
Fischer, R., 1997. Culture of Tilapia in open systems. Environment and Society. Vol. 3, pp: 47-62.
11
Koeypudsa, W. and Jongjareanjai M., 2011. Impact of water temperature and sodium chloride (NaCl) on stress indicators of hybrid catfish (Clarias gariepinus, Burchell x C. macrocephalus, Gunther). Songklanakarin Journal of Science and Technology. Vol. 33, pp: 369-374.
12
Leghari, S.M.; Laghari, A.; Jahangir, T.M. and Khuhawar, M.Y., 2005. Natural treatment system. Journal of Water Environmental Research. Vol. 66, pp: 21-29.
13
Miller, R.; Major, J. and Trinca, P., 2011. How a lagoon works. Waste management. Vol. 1, pp: 54-62.
14
Monzavi, M., 2008, Wastewater Treatment, University of Tehran Press, Tehran. 390 p.
15
Naseri, S., 2001. Methods and health standards and management of wastewater reuse projects", Water and Environment Journal. Vol 34. pp: 26-32.
16
Patricia, A.C.; Catherine, K.K.; Jonathan, S.S. and Julie, A.M. 2014. Direct evidence of histopathological impacts of wastewater discharge on resident Antarctic fish (Trematomus bernacchii) at Davis Station, East Antarctica, Marine Pollution Bulletin. Vol. 87, pp: 48-56.
17
Sartaj,M.;FathollahiDehkordi,F. and Filizadeh, Y., 2004. Survey of pollutant Resources, self-purification and elimination of industrial agricultural and municipal pollutants. Iranian Natural Resources J. Vol. 58, pp: 623-634.
18
Silva, C.; Quadros, S.; Ramalho, P.; Alegre, H. and Rosa, M.J., 2014. Translating removal efficiencies into operational performance indices of wastewater treatment plants. Water Research. Vol. 57, pp: 202-214.
19
Tchobanoglous,G.andBurton,F.,2004. Wastewater Engineering, Treatment, Disposal, Reuse. McGraw Hill. 524 p.
20
Yargholi, B., 2010. Environmental regulations and waste water re-use return. Naghsh Mehr press, Tehran. 535 p.
21
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی اثر عصاره هیدروالکلی گزنه (Urtica dioica) بر برخی شاخص های خون شناسی و بیوشیمیایی خون ماهی قرمز (Carassius auratus)
امروزه در آبزی پروری استفاده از محرک های ایمنی به ویژه گیاهان دارویی به عنوان جایگزین مواد شیمیایی و آنتی بیوتیک ها در کنترل و پیشگیری بیماری های آبزیان مورد توجه بسیاری از محققین قرار گرقته است. این مطالعه به منظور ارزیابی اثر تجویز رژیم غذایی عصاره گیاهی گزنه (Urtica dioica) بر برخی پارامترهای خون شناسی و بیوشیمیایی خون ماهی قرمز (Carassius auratus) به مدت 8 هفته صورت گرفته است. تیمارهای آزمایشی 3 تیمار عصاره گیاه گزنه با دوزهای 2، 4 و 8 گرم در کیلوگرم غذا و یک تیمار شاهد (بدون عصاره گیاهی)، هرکدام با 2 تکرار حاوی 5 ماهی با میانگین وزنی 4/70±21/88، در 8 مخزن توزیع شدند. نتایج نشان داد که افزایش میزان عصاره گیاهی سبب بهبود شاخص های خونی و بیوشیمیایی شد که البته این افزایش در هیچ یک از پارامترهای اندازه گیری شده در بین تیمارها معنی دار نبود. به طوری که میزان شاخص های خون شناسی (گلبول قرمز و سفید، هماتوکریت) و اندیس های خونی (MCV، MCH و MCHC) بین تیمارهای آزمایشی اختلاف معنی داری نشان ندادند (0/05<p). میزان آلبومین در تیمار تغذیه شده با عصاره گزنه به ویژه در سطح 4 گرم بر کیلوگرم غذا به طور معنی داری (0/05>p) نسبت به گروه شاهد و سایر تیمارهای تغذیه شده با عصاره گزنه افزایش نشان داد. در مقایسه مقادیر گلوکز، کلسترول و تری گلیسیرید سرم خون ماهیان قرمز تغذیه شده با عصاره گزنه در پایان آزمایش با تیمار شاهد اختلاف معنی داری (0/05<p) مشاهده نگردید. به طورکلی می توان نتیجه گرفت که غلظت های بالای گزنه می تواند موجب بهبود عملکرد برخی شاخص های فیزیولوژیک ماهی قرمز گردند.
http://www.aejournal.ir/article_69789_31b39cba545f1f4d9cb620a9a7528a64.pdf
2018-06-22
189
196
عصاره گزنه
ماهی قرمز
شاخص های خونی و بیوشیمیایی
شبنم
نژاد مقدم
aseman_2000_88@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: ۱۵۷۳۹-۴۹۱۳۸، گرگان، ایران
AUTHOR
محمدرضا
ایمانپور
mrimanpoor@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: ۱۵۷۳۹-۴۹۱۳۸، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
ولی اله
جعفری
jafari@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: ۱۵۷۳۹-۴۹۱۳۸، گرگان، ایران
AUTHOR
رقیه
صفری
fisheriessafari@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: ۱۵۷۳۹-۴۹۱۳۸، گرگان، ایران
AUTHOR
بهمنی، م.؛ حسینی فرد، س.م. و اهدایی، م.، 1393. مطالعه اثرات عصاره های آبی و الکلی گیاه مرزنجوش(Origanum vulgare L.) بر درصد بقاء و برخی از شاخص های خونی ماهی کپور معمولی آلوده با آئروموناس هیدرو فیلا (Aeromunas hydrophila). فصلنامه علمی پژوهشی اکوبیولوژی تالاب. سال 6، شماره 21، صفحات 73 تا 81.
1
زرگری، ع.، 1375. گیاهان دارویی. انتشارات دانشگاه تهران. چاپ چهارم. صفحات 106 تا 117.
2
کاظمی، ر.ا.؛ پوردهقانی، م.؛ یوسفی جوردهی، ا.؛ یارمحمدی، م. و نصری تجن، م.، 1389. فیزیولوژی دستگاه گردش خون آبزیان و فنون کاربردی خون شناسی ماهیان. انتشارات بازرگان، 194 صفحه.
3
نژادمقدم، ش. و صفری، ر. در دست چاپ. ارزیابی اثر عصاره گیاه گزنه (Utrica dioica L) بر پاسخ ایمنی موکوسی و بیان ژن مربوط به ایمنی TNF-alfa در ماهی قرمز (Carassius auratus gibelio).
4
همایون پور، م.، 1394. تاثیر پودر گزنه بر شاخص های رشد و بازماندگی کپور معمولی (carpio Cyprinus). پایان نامه کارشناسی ارشد تکثیر و پرورش آبزیان، دانشکده شیلات، دانشگاه زابل. 58 صفحه.
5
Aldrin, J.F.; Messager, J.L. and Saleun, S., 1984. Analyses sanguines de turbots d’elevages immature8 (Scophtalmus maximus L.). Aquaculture. Vol.40, pp: 17-25.
6
Allardice, P., 2003. A-Z of companion planting. United Kingdom: Harper Collins Publishers; 1993. 208 p.
7
Al-Salahy, M.B., 2002. Some physiological studies on the effect of onion and garlic juices on the fish, Clarias lazera. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 27, pp: 129-142.
8
Anderson, D.P., 2003. Disease of Fishes. Narendra Publishing House Delhi. pp: 22-73.
9
Atkinson, E. and Judd, F.W., 1978. Comparative hematology of Lepomis microlophus and Ciehlasoma ceyanoguttatum. Copeia. Vol. 2, pp: 230-237.
10
Awad,E.; Austin, D.R. and Lyndon, A., 2013. Effect of black cumin seed oil (Nigella sativa) and nettle extract (Quercetin) on enhancement of immunity in rainbow trout, Oncorhynchus mykiss (Walbaum). Aquaculture. Vol. 388-391, pp: 193-197.
11
Ballarin, L.; Dalloro, M.; Bertotto, D.; Libertini, A.; Francenscon, A. And Babaro, A., 2004. Haematological parameters in Umbrina cirrosa (Teleostei, Sciaenidae): a comparison between diploid and triploid specimens. Comparative biochemistry and physiology. Vol. 138, pp: 45-51.
12
Basu, N.; Nakano, T.; Grau, E.G. and Iwama, G.L., 2001. The effect of cortisol on heat stock protein 70 levels in two fish species. General and Comparative Endocrinology. Vol. 124, pp: 97-105.
13
Belanger, J.M.; Son, J.H.; Laugero, K.D.; Moberg, G.P.; Dorochov, S.I.; Lankford, S.E. and Cech, J.J., 2001. Effects of short-term management stress and ACTH injections on plasma cortisol levels in cultured white sturgeon, Acipenser transmontanus. Aquaculture. Vol. 203, pp; 165-176.
14
Binaii, M.; Ghiasi, M.; Farabi, M.; Pourgholam, R.; Fazli, H.; Safari, R.; Alavi, E.; Taghavi, M. and Bankehsaz, Z., 2014. Biochemical and hemato-immunological parameters in juvenile beluga (Huso huso) following the diet supplemented with nettle (Urtica dioica). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 36, pp: 46-51.
15
Blaxhall, P.C. and Daisley, W., 1973. Routine haematological methods for use with fish blood. Journal of Fish Biology. Vol. 5, pp: 771-781.
16
Brufa, J.; Esteve, E. and Tarradas, J., 2015. Review of immune stimulator substances/agents that are susceptible of being used as feed additives: mode of action and identification of end-points for efficacy assessment. External Scientific assessment. pp: 1-267.
17
Cataldi, E.; Di Marco, P.; Mandich, A. and Cataudella, S., 1998. Serum parameters of Adriatic Sturgeon Acipenser naccarii (Pisces: Acipenseriformes): Effects of temperature and stress. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 120, pp: 273-278.
18
Chang. J.P.; Johnson. J.D.; Van Goor, F.; Wong, C.J.; Yunker, W.K.; Uretsky, A.D.; Taylor, D.; Jobin, R.M.; Wong, A.O. and Goldberg, J.I., 2000. Signal transduction mechanisms mediating secretion in goldfish gonadotropes and somatotropes. Biochem. Cell Biol. Vol. 78, pp: 139-153.
19
Chelladurai, G.; Veni, T.; Mohanraj, J. and agarajan, R.N., 2014. Effect of Herbal Extracts Supplemented diets on Non Specific Immunity and Resistance to Aeromonas hydrophila in Indian cat fish (Mystus montanus). Journal of Zoological and Bioscience. Vol. 1, No. 1, pp: 10-14.
20
Citarasu, T.; Sekar, R.R; Babu, M.M. and Marian, M.P., 2002. Developing Artemia enriched herbal diet for producingquality larvae in Penaeus monodon. Asian Fish Sci. Vol. 15, pp: 21-32.
21
Dar, S.A.; Ganai, A.F.; Yousuf, A.R.; Balkhi, M.U.H.; Bhat, T.M. and Bhat, F.A., 2012. Bioactive potential of leaf extracts from Urtica dioica L. against fish and human pathogenic bacteria. African Journal of Microbiology Research. Vol. 41, pp: 6893-6899.
22
Douglass, J.W. and Jane, K.W., 2010. Schalm’s Veterinary Hematology. John Wiley and Sons, Blackwell Publishing Ltd. 1232 p.
23
Dugenci, S.K.; Arda, N. and Candan, A., 2003. Some medicinal plants as immunostimulant for fish. Journal of Ethnopharmacology. Vol. 88, No. 1, PP: 99-106.
24
FAO. 2014. Aquaculture Department The state of world fisheries and aquaculture 2014. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome. 243 p.
25
Fazio, F.; Marafioti, S.; Arfuso1, F.; Piccione1, G. and Faggio, C., 2013. Comparative study of the biochemical and haematological parameters of four wild Tyrrhenian fish species. Veterinarni Medicina. Vol. 58, pp: 576-581.
26
Feldman, B. F.; Zinkl, J. G. and Jain, N.C., 2000. Schalm's Veterinary Hematology. 5th ed. Lippincott Williams and Wilkins. pp: 1120-1124.
27
Gabor, E.F.; Şara, A. and Barbu A., 2010. The effects of some Phyto-additives on growth, health and meat quality on different species of fish. Scientific Papers: Animal Sciences and Biotechnologies. Vol. 43, pp: 61-65.
28
Ghasemi, H.A.; Taherpour, K.; Hajkhodadadi, I. and Akhavan-Salamat, H., 2014. Comparative Effects of Nettle (Urtica Dioica) and Commercial Feed Additives on Productive Performance and Blood Lipid Profile of Broiler Chickens. Journal of Animal Science Advances. Vol. 4, pp: 633-640.
29
Ghiraldelli, L.; Martins, M.L.; Yamashita, M.M. and Jeronimo, G.T., 2006. Ectoparasites influence on the hematological parameters of Nile tilapia and carp cultured in the State of Santa Catarina, South Brazil. Journal of Fisheries and Aquatic Science. Vol. 1, pp: 270-276.
30
Graham, M.S.; Haedrich, R.L. and Fletcher, G.L., 1985. Hematology of three deep-sea fishes: A refection of low metabolic rates. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 80, pp: 79-84.
31
Haney, D.C.; Hursh, D.A; Mix, M.C. and Winton, J.R., 1992. Physiological and hematological changes in chum salmon artificially infected with Erythrocytic Necrosis Virus. Journal of Aquatic Animal Health. Vol. 4, pp: 48-57.
32
Houston, A., 1990. Blood and circulation, In: Shreck CB, Moyle PB (Editors). Methods for fish biology. American Fisheries Society, Bethesda, Maryland. 704 p.
33
Kori-Siakpere, O.; Ake, J.E.G. and Idoge, E., 2005. Haematological characteristics of the African snakehead, Parachacnna obscura. African Journal of Biotechnology Academic Journals. Vol. 6, pp: 527-530.
34
Krystofova, O.; Adam, V.; Babula, P.; Zehnalek, J.; Beklova, M.; Havel, L. and Kizek, R., 2010. Effects of Various Doses of Selenite on Stinging Nettle (Urtica dioica L.). International Journal of Environmental Research and Public Health. Vol. 7, pp: 3804-3815.
35
Ling, N. and Wells, R.M.G., 1985. Plasma catecholamines and erythrocyte swelling following capture stress in a marine teleost tish. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 82, pp: 231-234.
36
Lourdes, R.F.; Jorge, R.E.; Scott, B.; Dea H.R. and Eliseo, T., 2008. Risks and benefits of commonly used herbal medicines in Mexico. Toxicology and Applied Pharmacology. Vol. 227, pp: 125-135.
37
Macey, D.J. and Potter, I.C., 1981. Measurements of various blood cell parameters during the life cycle of the southern hemisphere lamprey, Georria austrulis Gray. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 69, pp: 815-823.
38
Murray, S.A., 1984. Hematological study of the bluegill Lepomis macrochirus Raf. Comp. Biochem. Physiology. Vol. 78A, pp:787-791.
39
Murray, S.A. and Burton, C.B., 1979. Effects of density on goldfish blood-II. Cell morphology. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 62, pp: 559-562.
40
Muiswinkel, V., 2008. A history of fish immunology and vaccination I. The early days. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 25, pp: 397-408.
41
Nafisi Bahabadi, M., Banaee, M., Taghiyan, M. and Nematdoust Haghi, B., 2014. Effects of dietary administration of yarrow extract on growth performance and blood biochemical parameters of rainbow trout (Oncorhynchusmykiss). International Journal of Aquatic Biology. Vol. 2, No. 5, pp: 275-285.
42
Peyghan,R.; Khadjeh, GH.H. and Enayati, A., 2014. Effect of water salinity on total protein and electrophoretic pattern of serum proteins of grass carp, Ctenopharyngodon idella. Veterinary Research Forum. Vol. 5, pp: 225-229.
43
Popescu, I.C. and Si colab, M., 1990. Tehnologii de refacere, substituire şi ameliorare a cvercetelor slab productive (Remake, substitution and amelioration techenologies for low productive oaks), Bucureşti.
44
Ranzani-Paiva, M.J.T.; Felizardo, N.N. and Luque, J.L., 2005. Parasitological and hematological analysis of Nile tilapia Oreochromis niloticus Linnaeus, 1757 from Guarapiranga reservoir, Sao Paulo State, Brazil. Acta Scientiarum. Vol. 27, pp: 231-237.
45
Rehulka, J., 2000. Influence of astaxanthin on growth rate, condition, and some blood indices of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss). Journal of Aquaculture. Vol. 190, pp: 27-47.
46
Ruane, N.M.; Nolan, D.T.; Rotlant, J.; Costello, E.J. and Weendellar Bonga, S.E., 2000. Experimental exposure of rainbow trout Oncorhynchus mykiss (Walbaum) to the infective stages of the sea louse Lepeophtheirus salmonis (Kroyer) influ-ences the physiological response to an acute stressor. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 10, pp: 451-463.
47
Sajfrtova, M.H.; Sovova, L.; Opletal, and Bartlova, M., 2005. Near-critical extraction of β-sitosterol and scopoletin from stinging nettle roots. The Journal of Supercritical Fluids. Vol. 35. pp: 111-116.
48
Sales, J. and Janssens, G.P.J., 2003. Nutrient requirements of ornamental fish. Aquatic Living Resources, Vol. 16, pp: 533-540.
49
Soengas, J.L. and Aldegunde, M., 2002. Energy metabolism of fish brain. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 131, pp: 271-296.
50
Soivio, A. and Nikinmaa, M. 1981. The swelling of erythrocytes in relation to the oxygen affinity of the blood of the rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson. In Stress andFish(Edited by Pickering A. D.). AcademicPress, London. pp: 103-l 19.
51
avares, M. and Moraes, F.R., 2007. Leukocyte and thrombocyte reference values for channel catfish (Ictalurus punctatus Raf.), with an assessment of morphological, cytochemical, and ultrastructural features. Veterinary clinical Pathology. Vol. 36, pp: 49-54.
52
omas, L., 1998. Clinical Laboratory Diagnostics. Lsl ed. Frankfort: TH-Books Verlagsgesellschaft. pp: 652-656.
53
Torres, P., Duthie, G.G. and Tort, L., 1986. Statistical relations of some blood parameters along recovery from imposed stress in dog fish. Reu. Esp. Physiology. Vol. 42, pp: 7-14.
54
Vesogh, G.H. and Mostageer, B., 1995. Freshwater fish. Press Tehran University of Iran. 317 p.
55
Viegi, L.; Pieroni, A.; Guarrera, P.M. and Vangelisti, R., 2003. A review of plants used in folk veterinary medicine in Italy as basis for a databank. Journal of Ethnopharmacology. Vol. 89, pp: 221-244.
56
Wells, R.M.G.; Baldwins, J.; Seymour.S.; Christian, K. and Brittain, T., 2005. Red blood cell function and haematology in two tropical freshwater fishes from Australia. Comp. Biochem Physiology. Vol. 141, pp: 87-93.
57
Wiegand, M.D.; Hataley, J.M.; Kitchen, C.L. and Buchanan, L.G., 1989. Induction of developmental abnormalities in larval goldfish, Carassius auratus (L) under cool incubation conditions. Journal of Fish Biology. Vol. 35, pp: 85-95.
58
Zuanon, J.A.S. and Salaro, A.L., 2011. Nutrition Aquaculture. The Dietary Dilemma. http://www .pondone. co.uk/guide _ feeding_fish.php
59
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین میزان آفلاتوکسین و فلور قارچی خوراک مصرفی قزلآلای رنگینکمان در کارگاههای پرورشی استان البرز
آفلاتوکسینها سمومی هستند که توسط قارچهای رشتهای آسپرژیلوس دسته فلاووی (گروه آسپرژیلوس فلاووس) تولید میشوند. این قارچها قابلیت رشد و تولید سم در خوراک دام یا مواد اولیه تشکیل دهنده خوراک در محیط با شرایط دمای بیش از 27درجه سانتی گراد و رطوبت بالای 16٪ را دارا هستند. در بین ماهیان پرورشی قزل آلای رنگین کمان حساسترین گونه نسبت به آفلاتوکسینها میباشد. حضور این سم در خوراک ماهی قزل آلا موجب کاهش رشد، تضعیف سیستم ایمنی، اختلال در انعقاد خون، بروز تومورهای کبدی و به دنبال آن تلفات میگردد. در تحقیق حاضر 20 نمونه خوراک کارخانه ای از 20 کارگاه پرورش قزل آلا در استان البرز در فصل پاییز نمونه گیری شد و میزان سطح آفلاتوکسین کل با استفاده از روش الایزای مستقیم اندازه گیری گردید. میزان آفلاتوکسین در دامنه بین ppb 1/34 و ppb 12/4 و میانگین ppb 4/69 گزارش گردید که این میزان کم تر از حد مجاز بود. نمونه های خوراک از نظر فلور قارچی نیز مورد بررسی قرار گرفتند. 7 جنس (آسپرژیلوس، موکور، فوزاریوم، آلترناریا، پنی سیلیوم، رایزوپوس و آبسیدیا) شناسایی گردید که جنس آسپرژیلوس با 46/3% بالاترین میزان فراوانی را داشت. دربین گونه های این جنس، آسپرژیلوس فلاووس 48/2% بالاترین و فومیگاتوس با 5/3% پایین ترین فراوانی نسبی را دارا بود. آسپرژیلوس نایجر نیز با 19 مورد گزارش 34% از فراوانی را به خود اختصاص داد.علی رغم پایین بودن سم آفلاتوکسین و با توجه به قارچهای جدا شده از خوراک، پتانسیل تولید سموم قارچی وجود دارد. بنابراین وضعیت و طول مدت نگه داری خوراک، از عوامل مهم تعیین کننده به حساب می آید.
http://www.aejournal.ir/article_69803_084af74f8a80fa548f8b2a8539b0cb96.pdf
2018-06-22
197
204
آفلاتوکسین
فلور قارچی
آسپرژیلوس
قزل آلای رنگین کمان
استان البرز
آریا
میرزایی پور
aria666_bobo@yahoo.com
1
گروه بهداشت، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرج، کرج، ایران
AUTHOR
بابک
شعیبی عمرانی
drshoaibi74@gmail.com
2
گروه بهداشت، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد کرج، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
سهیل
علی نژاد
soheilalinezhad@gmail.com
3
موسسه آموزش عالی علمی کاربردی جهاد کشاورزی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
ابراهیمی محمدی، ک. و رضویلر،و.، 1390. بررسی میزان شیوع گونه های آفلاتوکسین زای آسپرژیلوس و باقی ماندة آفلاتوکسین به روش الایزا در خوراک ماهی قزلآلای رنگین کمان در استان های تهران و آذربایجان غربی. پاتوبیولوژی مقایسه ای. سال 8، شماره 1، صفحات 385 تا 394.
1
سالنامهآماریسازمانشیلاتایران .1393 .دفتر برنامه و بودجه، واحد آمار و مطالعات توسعه شیلاتی، سازمان شیلات ایران.
2
سازمان استاندارد ایران، استاندارد ملی شماره 7570
3
سپهداری، ا.، 1388. بررسی تغییرات هیستوپاتولوژیک و باقی مانده بافتی ناشی از مصرف خوراک مقادیر مختلف آفلاتوکسین B1 در فیل ماهی پرورشی (Huso huso). پایان نامه برای دریافت درجه دکترای تخصصی در رشته بهداشت و بیماری های آبزیان از دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران. صفحات 8 تا 15.
4
سپهداری، ا.؛ ابراهیم زاده موسوی، ح.؛ شریف پور، ع.؛ مطلبی مغانجوقی، ع.؛ خسروی، ع.؛ کاکولکی، ش.؛ پورعلی فشتمی، ح.؛ معصوم زاده، م. و حلاجیان، ع.، 1388. بررسی کمی و کیفی جراحت های پوستی ناشی از مصرف خوراکی مقادیر مختلف آفلاتوکسین (B1 (AFB1 در فیل ماهی پرورشی (Huso huso ). مجله علمی شیلات. سال 18، شماره 2، صفحات 43 تا 52.
5
علامه، ع. و رزاقی ابیانه، م.، 1380. مایکوتوکسین ها. انتشارات دانشگاه امام حسین (ع).
6
علینژاد، س.؛ رزاقی ابیانه، م.؛ قائم مقامی، س.س.؛ خواجه رحیمی، ا.ا.؛ رهاننده، م. و صابری، س.ر.، 1392. تعیین آلودگی قارچی در غذای دستساز و کارخانهای قزلآلای رنگین کمان. نشریه دامپزشکی (پژوهش و سازندگی). شماره 100، صفحات 35 تا 46.
7
کیهان پور، ع. و میگلی نژاد، ا.، 1393. گزارش آماری و تحلیلی تشریحی فائو در مورد تولید جهانی آبزیان در سال 2014.
8
هژیر، م.؛ صنوبرطاهانی، ن.؛ رشیدی، ک.؛ رضایی، ر. و شیخی، ح.، 1387. بررسی میزان آفلاتوکسین M1 در شیرخام تحویلی به کارخانه شیر پاستوریزه سنندج. مجله علمی دانشگاه علوم پزشکی کردستان. دوره 13، صفحات 44 تا 50.
9
Alinezhad, S.; Tolouee, M.; Kamalzadeh, A.; Motalebi, A.A.; Nazeri, M.; Yasemi, M.; Shams Ghahfarokhi, M.; Tolouei, R. and Razzaghi Abyaneh, M., 2011. Mycobiota and aflatoxin B1 contamination of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) feed with emphasis to Aspergillus section Flavi. Iranian journal of fisheries. Vol. 10, No. 3, pp: 363-374.
10
Ashley, L.M., 1970. Pathology of fish fed aflatoxins and other antimetabolites. A Symposium on Diseases of Fish and Shellfishes, Washington, American Fisheries Society. pp: 366-379.
11
Bennett, J.W. and Klich, M., 2003. Mycotoxins. Clinical Microbiology Reviews. Vol. 16, pp: 497-516.
12
Berry, C.L., 1998. The Pathology of mycotoxins. Journal of Pathology. Vol. 154, pp: 301-311.
13
Bintvihok, A.; Ponpornpisiti, A.; Tangtrongpirus, J.; Panichkriangkari, W.; Rattannapanec, R.; Doris, K. and Kumagi, S., 2003. Aflatoxin contamination in shrimp feed and effects of aflatoxin addition to feed on shrimp production, Journal of Food Protection. Vol. 66, No. 5, pp: 882-885.
14
Cagauan, A.G.; Tayaban, R.H.; Somga, J. and Bartolome, R.M., 2004. Effect of aflatoxin contaminated feeds in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). In: Abstract of the 6th International Symposium on Tilapia in Aquaculture (ISTA 6) Section: Health Management and Diseases Manila, Philippines. pp :172-178.
15
Charoen Pornsook, K. and kavisarasai, P., 2006. Mycotoxins in animal feedstuffs of Thailand. KMITL Science and Technology Journal. Vol. 6, pp: 25-28.
16
Chavez, S.; Martines, P.; Osorio, M.; Palacios, C.A.M. and Mareno, I.O., 1994. Pathological effects of feeding young Orechromis niloticus diets supplemented with different levels of aflatoxin. Aquaculture. Vol. 127, pp: 49-61.
17
Coulombe, R.A., 1993. Biological action of mycotoxins. Journal of Dairy Science. Vol. 76, pp: 880-891.
18
Cutuli, M.T.; Cuellar, A.; Camara, J.M.; Mateos, A. and Suarez, G., 1991. Different media and methodologies for the detection of aflatoxin production by Aspergillus flavus strains isolated from trout feed. Mycopathologia. Vol. 113, pp: 121-125.
19
Dutta, T.K. and Das, P., 2000. Isolation of aflatoxigenic strains of Aspergillus and detection of aflatoxine B1 from feeds in India. Mycopathologia. Vol. 151, pp: 29-33.
20
Fegan, D., 2005. Mycotoxins: the hidden menace. http://www. alltech. com.
21
Fraga, M.E.; Curvello, F.; Gatti, M.J.; Cavaglieri, L.R.; Dalcero, A.M. and Rocha Rasa, C.A., 2007. Potential aflatoxin and ochratoxin A production by Aspergillus species in poultry feed processing. Veterinary Research Communications. Vol. 31, pp: 343-353.
22
Ghaemmaghami, S.S.; Modirsaneii, M.; Khosravi, A. and Razzaghi Abyaneh, M., 2016. Study on mycoflora of poultry feed ingredients and finished feed in Iran. Iranian Journal of Microbiology. Vol. 8, No. 1, pp: 47-54.
23
Gibson, A.M.; Baranyi, J.; Pitt, M.J.; Eyles, M.J. and Robert, T.A., 1994. Predicting fungal growth: The effect of water activity on Aspergillus flavus and related species. International Journal of Food Microbiology. Vol. 23, pp: 419-431.
24
Hedayati, M.T.; Pasqualotto, A.C.; Warn, P.A. and Bowyer, P., 2007. Aspergillus flavus: human pathogen, allergen and mycotoxin producer. Journal of Microbiology. Vol. 153, pp: 1677-1692.
25
Jantraroti, W. and Lovell, R.T., 1990. Subchronic toxicity of dietary aflatoxin B1 to channel catfish. Journal of Aquatic Animal Health. Vol. 2, pp: 248-254.
26
Keller, K.M.; Queiroz, B.D.; Keller, L.A.M.; Ribeiro, J.M.M.; Cavaglieri, L.R.; Gonzalez Pereyra, M.L.; Dalcero, A.M. and Rosa, C.A.R., 2007. The mycobiota and toxicity of equine feeds. Veterinary Research Communications. Vol. 31, pp: 1037-1045.
27
Khoo, L., 2000. Fungal diseases in fish. Seminars in Avian and Exotic pet medicine. Vol. 9, pp: 102-111.
28
Labuda, L. and Tanvinova, D., 2006. Fungi recovered from Slovakian poultry feed mixtures and their toxinogeniety. Annals of Agricultural and Environmental Medicine. Vol. 13, pp: 193-200.
29
Lovell, R.T., 2001. Nutrition and feeding of fish, 2nd Edn. Haworth Press, New York, pp: 24-28.
30
Mahoney, N.; Molyneux, R.J. and Campbell, B.C., 2000. Regulation of aflatoxin production by naphtoquinones of walnut (Juglans regia). Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 48, pp: 4418-4421.
31
Miller, D.M. and Wilson, D.M., 1994. Veterinary diseases related to aflatoxins. In: The Toxicology of Aflatoxin: Human health, veterinary and agricultural significance (Eaton, D.L., Groopman, J.D. eds.,), Academic Press Inc., New York. pp: 347-360.
32
Motalebi, A.A.; Ardalani, K. and Jamili, S., 2003. Effect of temperature on the produced aflatoxins in the rainbow trout feed in West Azerbaijan province. Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 3, pp: 392-397.
33
Philips, T.D.; Clement, B.A. and Park, D.L., 1994. Approaches to reduction of aflatoxins in foods and feeds. In D.L. Eaton & J.D. Groopman (Eds). The Toxicology of Aflatoxins: Human health, veterinary and agricultural significance. pp: 383-406.
34
Ryan Georgianna, D. and Payne, G.A., 2009. Genetic regulation of aflatoxin biosynthesis: from gene to genome. Fungal Genetics and Biology. Vol. 46, pp: 113-125.
35
Samson, R.A.; Hoekstra, E.S.; Frisvad, J.C. and Filtenborg, O., 2000. Introduction to Food and Airborne Fungi, Sixth edn. The Netherlands: CBS-Utrechti.
36
Spring, P. and Fegan, D.F., 2005. Mycotoxins- a rising threat to aquaculture? In: Nutritional Biotechnology in the Food and Food Industries: Proceeding of Altech`s 21st Annual Symposium (T.P. Lyons and K.A. Jacques, eds.). pp: 323-332.
37
Wiseman, M.O.; Price, R.L.; Lightner, D.V. and Wiliams, R.R., 1982. Toxicity of aflatoxin B1 to Penaeid shrimp. Applied and Environmantal Microbiology. Vol. 44, pp: 1479-1481.
38
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی و مقایسه شاخصهای شیمیایی و پروفایل اسیدهای آمینه ماهی قزلآلای رنگین کمان دودی شده به دو روش سرد و گرم
امروزه روشهای مختلفی جهت حفظ، نگه داری و بالا بردن زمان ماندگاری فرآوردههای شیلاتی مورد استفاده قرار میگیرد و در تمام این روشها تلاش میشود که ارزش غذایی محصول نهایی با کم ترین افت کیفی همراه گردد که از بین این روش ها دودی کردن صنعتی جایگاه ویژهای در کشورهای پیشرفته دارد. در این تحقیق ماهی قزلآلای رنگین کمان دودی شده به دو روش دودی گرم صنعتی و سرد تهیه گردید. بدین منظور برای دودی گرم، ماهی پس از آماده سازی اولیه در دستگاه صنعتی Atmoos ابتدا در دمای ملایم (cه35) به مدت 30 دقیقه خشک گردیده و سپس به مدت 5 ساعت در دمای نهایی cه 800 دودی گردیده و در دودی سرد ابتدا از دمای cه 27 به مدت 30 دقیقه خشک گردیده و سپس به مدت 10 ساعت در دمای نهایی cه35 دودی گردید. تیمارهای تولیدی به مدت یک ماه در دمای یخچال (cه 10±3) نگهداری شد و از نظر تغییرات شیمیایی و پروفایل اسیدهای آمینه مورد بررسی قرار گرفتند. نتایج آنالیز آماری نشان داد که بین دو تیمار درنظر گرفته شده از نظر مقدار تیوباربیتوریک اسید (TBArs)، ازت فرار (TVB-N) و pH اختلاف معنیدار بوده است (0/05>P). از 14 اسید آمینه اندازهگیری شده در سه تیمار ماهی تازه به ترتیبب مربوط به اسیدآمینه گلوتامیک> لوسین > آسپارتیک> لیزین > آلانین > والین بوده و پس از دودی کردن به روش گرم و سرد کاهش معنی داری نداشته است (0/05<P) و در کل داده های بین ماهی تازه و دو تیمار دودی در مواردی تفاوت معنی دار بوده است (0/05>P) و در نتیجه گیری کلی تیمار دودی گرم در اولویت از لحاظ قابلیت مصرف و ارزش تغذیهای قرار گرفته است.
http://www.aejournal.ir/article_69809_e07d8286de7b483766e93ba1f5a96a4d.pdf
2018-06-22
205
210
دودی گرم
دودی سرد
عمر ماندگاری
اسیدهای آمینه
قزلآلای رنگین کمان
آزاده
عباس خلیلی
h.madadi60@yahoo.com
1
گروه علوم و مهندسی صنایع غذایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
ژاله
خوشخو
zhaleh_khoshkhoo@yahoo.com
2
گروه علوم و مهندسی صنایع غذایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
قربان
زارع گشتی
zarehgashti@yahoo.com
3
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی (تحقیقات فرآوری آبزیان)، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، رشت، ایران
AUTHOR
آمارنامه سازمان شیلات ایران. 1395.
1
بشارتی، ن. و حسینی، س.، 1387. بررسی زمان ماندگاری ماهی سفید دودی شده به روش سنتی در یخچال و محیط طبیعی براساس شاخص شیمیایی TVB-N. مجله اولین کنفرانس ملی علوم شیلات و آبزیان ایران. لاهیجان. صفحات 1 تا 7.
2
زارع گشتی، ق.، 1384. عمل آوری گوشت فیل ماهی و قره برون پرورشی و ارزیابی کیفیت صادراتی آن. انتشارات موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 46 صفحه.
3
کوچکیان، ا.، 1390. فناوری تولید فرآورده های شیلاتی. انتشارات مؤسسه آموزش عالی علمی کاربردی جهاد کشاورزی.
4
AOAC. 2000. Official methods of analysis. 17th ed., Association of official analytical chemeists, Washington. DC.
5
AOAC. 2015. Official methods of analyses of association of analytical chemist (15th ed). Washington, DC.
6
Auburg, S.P., 1993: Review: interaction of malondialdehyde with biological molecules new trends about reactivity and significance.Int. J. Food Sci. Technol. Vol. 28, pp: 323-335.
7
Arias, G., 2014. Effects of different thermal treatments and storage on the proximate composition and protein quality in canned tuna. Instituto de Ciencia y Tecnología de los Alimentos. 10 p.
8
Besharati, N.; Eyporsdottir, A. and Einarsson, H., 2004. Preliminary observations on nutritional and microbiological chages of hot and cold smoked trout (Oncorhynchus mykiss). The united nations university Training Programme. 51 p.
9
Bernardi, C.; Ripamonti, B.; Campagnoli, A.; Stella, S. and Cattaneo, P., 2009. Shelf-life of vacuum packed Alaskan, Scottish and Norwegian cold-smoked salmon available on the Italian market. International Journal of Food Science and Technology. Vol. 44, pp: 2538-2546.
10
Cakli, S.; Kilinc, B.; Dincer, T. and Tolasa,S., 2006. Comparison of the shelf lifes of MAP and Vacuum packaged hot smoked rainbow trout (Onchoryncus mykiss). Euroup Food Research Technology. Vol. 224, pp: 19-26.
11
Cardinal, M.; Gunnlaugsdottir, H.; Bjoernevik, M.; Ouisse, A.; Vallet, L.J. and Leroi, F., 2004. Sensory characteristics of cold smoked Atlantic salmon (Salmo salar) from European market and relationships with chemical, physical and microbiological measurements. Food Research International. Vol. 37, pp: 181-193.
12
Dang, T.T.H., 2013. The effect of smoking methodes on the quality of smoked mackerel. Fisheries Training
13
pogarame. 60 p.
14
Dondero, M.; Cisternas, F.; Carvajal, L. and Simpson,R., 2004. Changes in quality of Vacuum packed cold smoked salmon (Salmo salar) as a function of storage temperature.
15
FAO. 2010. The state of world fisheries and aquaculture 2008. ISSN: 1020-5489.
16
Fahim Dezhban, Y., 2008. Processing of Fisheries Products. 1st Ed, Published by Mehronabi. 291 p.
17
Fagan, J.D.; Gormley, T.R. and Mhuircheartaigh,M.M., 2004. Effect of Modified Atmosphere packaging with freeze chilling on some quality parameters of raw whiting, mackerel and salmon portions. Innovative Food Science and Emerging Technologies. Vol. 5, pp: 205-214.
18
Gonza lez, S., 2006. Composition of farmed and wild yellow perch (Perca flavescens). Jornal of food composition and analysis. Vol. 19, pp: 6-7.
19
Leroi, F.; Joffraud, J.J. and Chevalier, F., 2000b. Effect of salt and smoke on the microbiological quality of cold smoked salmon during storage at 5°C as estimated by factoial design method. J of Food Protection. Vol. 63, No. 9, pp: 1222-1227.
20
Lannelongue, M.; Finne, G.; Hanna, M.O.; Nickelson, R. and Vanderzandt, G.,1982. Storage characteristics ofbr own shrimp (Penaeus aztecus) stored in retail packages containing CO2 enriched atmospheres. Journal of Food Science. Vol. 47, pp: 911-913.
21
Luiza, M., 2010. Effects of hot and cold smoking processes on organoleptic properties, Yield & composition of matrinxa fillet. Revista Brasileka de Zootecniq. Vol. 39, pp: 695-700.
22
Ibrahim, S.M.; Nassar, A.G. and El Badry, N., 2008. Effect of modified atmosphere packaging and vacuum packaging methods on Some Quality Aspects of smoked mullet (Mugil cephalus). Global Veterinaria. Vol. 2, No. 6, pp: 296-300.
23
Matos, T.G.S.; Barreto, A.S.F.H. and Bernardo, F.M.A., 2005. Effect of shelf life period in modified atmosphere package and of processing technology on microflora of Portuguese smoked dry sausages. Revista Portuguesa de zootecnia. Vol. 2, pp: 15-35.
24
Oehlenschlager, J., 1981. Variation der gehelte an fluchtigen stickstofgehaltigen basen und TVB-N in Retbersch. Fischals Lebensm. Vol. 53, pp: 33-34.
25
Ovissipou, M., 2011. Fatty acid and Amino Acid Profiles of Domestic and Wild Beluga (Huso huso) Roe and Impact on Fertilization Ratio. Journal of aquaculture research and evelopment. Vol. 10, pp: 2-3.
26
Pantazi, D.; Papavergou, A.; Pournis, N.; Kontominas, M.G. and Savvaidis, I.N., 2008. Shelf-life of chilled fresh Mediterranean swordfish (Xiphias gladius) stored under various packaging conditions: Microbiological, biochemical and sensory attributes. Food Microbiol. Vol. 25, pp: 136-143.
27
Silva, L.V.A.; Prinyawiwatkul, W.; King, J.M.; Kyoon No, H.; Bankston Jr, J.D. and Ge, B., 2008. Effect of preservatives on microbial safety and quality of smoked blue catfish (Ictalurus furcatus) steaks during room-temperature storage. Food Microbiology. Vol. 25, pp: 958-963.
28
Stohr, V.; Joffraud, J.J.; Cardinal, M. and Leroi, F., 2001. Spoilage potential and sensory profile associated with bacteria isolated from cold smoked salmon. Food Research International. Vol. 34, pp: 797-806.
29
Sivertsvik, M.; Jeksrud, W.K. and Rosnes, J.T., 2002. A review of modified atmosphere packaging of fish and fishery products-significance of microbial growth activities and safety International Jornal Food Science Technology. Vol. 37, pp: 107-127.
30
Varlik, C.; Ugur, M.; Gökoglu, N. and Gün, H., 1993. Quality Control Methods and Principals for Aquaculture. Istanbul Society of Food Technology. Vol. 17, 98 p.
31
Woyewoda, A.D.; Shaw, S.J.; Ke, P.J. and Burns, B.G., 1986. Measurement of pH. recommended laboratory methods for assessment of fish quality 1-5. Canadian Technical Report of Fisheries and Aquatic Sciences Fisheries and Oceans, Halifax, Nova Scotia. 1448 p.
32
Yanar, Y.; Celik, M. and Akamca, E., 2006. Effects of brine concentration on shelf-life of hot smoked tilapia (Oreochromis niloticus) stored at 4°C. Food Chemistry. Vol. 97, pp: 244-247.
33
Yalcin, K., 2008. Fatty acid and amino acid composition of raw and hot smoked sturgeon (Huso huso). International J of Food Sciences and Nutrition. Vol. 59, pp: 635-642.
34
Zhao, F.; Zhuang, P.; Song, C.; Shi, Z. and Zhang, L., 2010. Amino acid & fatty acid compositions & nutritional quality of the muscle in the pomfret, Pampus punctatissimus. Food Chemistry. Vol. 118, No. 2, pp: 224-227.
35
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین میانگین صید بر واحد سطح (CPUA) و زی توده (Biomass) ماهی مرکب ببری (1831 ,Sepia pharaonis Ehrenberg) و یال اسبی سر بزرگ (Trichiurus lepturus Linnaeus,1758) در صید ترال کف (آب های استان سیستان و بلوچستان)
ماهی مرکب ببری و یال اسبی سربزرگ دو گونه صید هدف در ترال کشتی های صید صنعتی بوده که به دلیل ارزش صادراتی و ارزآوری دارای اهمیت بالایی ازنظر اقتصادی می باشند. در این مطالعه میزان زی توده و میانگین CPUA ماهی مرکب ببری و یال اسبی سربزگ در ترال کف دریای عمان (سواحل استان سیستان و بلوچستان) براساس آمار و اطلاعات جمع آوری شده گشت تحقیقاتی در ماه های شهریور و مهر سال 1395 با استفاده از کشتی فردوس 1 مورد بررسی قرار گرفت. کل منطقه مورد بررسی به 5 اشکوب با حروف M تا Q و 4 زیر منطقه با لایه عمقی 20-10، 30-20، 50-30 و 100-50 متر تقسیم شد و در مجموع 92 ایستگاه به صورت تصادفی انتخاب و ترال کشی گردید. مقدار زی توده و میانگین CPUA به روش مساحت جاروب شده محاسبه شد. بررسی حاضرنشان داد که بیش ترین و کم ترین مقدار میانگین CPUA ماهی مرکب ببری به ترتیب در مناطق M و Q با 894/0 و 64/1 کیلوگرم بر مایل مربع و بیش ترین و کم ترین مقدار میانگین CPUA یال اسبی سربزرگ به ترتیب در مناطق N و Q با 2485/3 و 49/9 کیلوگرم بر مایل مربع بود. بیش ترین و کم ترین مقدار زی توده ماهی مرکب ببری به ترتیب در مناطق P و Q با 240/3 و 64/6 تن و بیش ترین و کم ترین مقدار زی توده یال اسبی سربزرگ به ترتیب در مناطق N و M با 899/3 و 21/7 تن برآورد گردید. هم چنین بیش ترین و کم ترین مقدار میانگین CPUA و زی توده ماهی مرکب ببری و یال اسبی سربزرگ به ترتیب در لایه عمقی 100-50 متر و 20-10 متر به دست آمد. نتایج این مطالعه می تواند در مدیریت بهره برداری از ذخایر این گونه ها در دریای عمان مورد استفاده قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_69899_98124acb6dfb4249df0f9aa1f8370bfa.pdf
2018-06-22
211
216
صید بر واحد سطح (CPUA)
زی توده
ماهی مرکب ببری
یال اسبی سربزرگ
دریای عمان
رضا
عباسپور نادری
r_naderimail@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: ۱۵۷۳۹-۴۹۱۳۸، گرگان، ایران
AUTHOR
سید یوسف
پیغمبری
sypaighambari@gau.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: ۱۵۷۳۹-۴۹۱۳۸، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
تورج
ولی نسب
t_valinassab@yahoo.com
3
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، تهران، صندوق پستی: 149-14965
AUTHOR
رسول
قربانی
rasulghorbani@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: ۱۵۷۳۹-۴۹۱۳۸، گرگان، ایران
AUTHOR
حسین زاده صحافی،ه.،1376. فیزیولوژی تولیدمثل ماهی یال اسبی. پایان نامه دکتری دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات ایران. 222 صفحه.
1
خورشیدیان، ک.؛ نصیرنیا، م.؛ پارسامنش، ا.؛ شالباف، م.؛ کامرانی، ا.؛ دهقانی، پ.ر. و ولی نسب، ت.، 1373. گزارش نهایی برآورد ذخایر کفزیان خلیج فارس (اعماق 50-10 متر) با روش مساحت جاروب شده. سازمان تحقیقات و آموزش کشاورزی، موسسه تحقیقات شیلات ایران، 61 صفحه.
2
رزمجو، غ.، 1373. گزارش نهایی ارزیابی ذخایر ماهیان استان هرمزگان. مرکز تحقیقات شیلات دریای عمان. 72 صفحه.
3
رئیسی، ه.؛ حسینی، س.ع. و پیغمبری، س.ی.، 1391. بررسی ترکیب صید ضمنی تورهای ترال یال اسبی سربزرگ (Trichiurus lepturus) در شمال خلیج فارس، استان هرمزگان. مجله بهره برداری و پرورش آبزیان. جلد 1، شماره 1، صفحات 46 تا 57.
4
رئیسی، ه.؛ حسینی، س.ع.؛ پیغمبری، س.ی.؛ دلیری، م.؛ کامرانی، ا.؛ کبودی، ع. و نکورو، ع.، 1392. ارزیابی دقت و صحت روش های درون یابی در مطالعه پراکنش ماهی یال اسبی سربزرگ (Trichiurus lepturus L. 1785) در شمال خلیج فارس. فصلنامه بوم شناسی آبزیان. دوره 2، شماره 1، صفحات 11 تا 23.
5
صلاحی گزاز، م.؛ پیغمبری، س.ی. و عباسپورنادری، ر.، 1394. بررسی ساختار طولی، ترکیب صید و وضعیت تلاش صیادی ماهی مرکب ببری (Sepia pharaonis) در ترالرهای کف دریای عمان. اقیانوس شناسی. سال 6، شماره 24، صفحات 69 تا 76.
6
کمالی،ع.؛دهقانی،ر.؛بهزادی، س.؛ سالارپوری، ع. و درویشی، م.، 1382. گزارش بررسی وضعیت ذخایر ماهیان یال اسبی در آب های استان هرمزگان. پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان. 87 صفحه.
7
مرزبان، ع.؛ نوری نژاد، م.؛ نظاری، م.ع. و خدادادی، ر.، 1390. بررسی خصوصیات بیولوژیکی ماهی مرکب و صید آن در آب های استان بوشهر. همایش منطقه ای شیلات و آبزیان. 24 صفحه.
8
ولی نسب، ت.؛ کیوان، ا.؛ عمادی، ح. و عریان، ش.، 1379. بررسی ریخت سنجی ماهی مرکب ببری (Sepia pharaonis) در آب های خلیج فارس و دریای عمان. مجله علمی شیلات ایران. سال 9، شماره 4، صفحات 79 تا 92.
9
ولی نسب، ت.؛ آژیر، م.؛ مومنی، م.؛ مبرزی، ع.؛ صفی خانی، ح. و دریانبرد، غ.، 1390. پایش ذخایر کفزیان به روش مساحت جاروب شده در آب های دریای عمان (1387-1383). موسسه تحقیقات شیلات ایران. 356 صفحه.
10
ولی نسب، ت.؛ آژیر، م.ت.؛ دهقانی، ر.؛ مبرزی، ع.؛ هاشمی، س.ا. و دریانبرد، غ.، 1391. تعیین میزان توده زنده کفزیان خلیج فارس و دریای عمان به روش مساحت جاروب شده (1391-1388). موسسه تحقیقات شیلات ایران. 307 صفحه.
11
ولی نسب، ت.؛ دهقانی، ر.؛ مبرزی، ع.؛ آژنگ، ب. و دریانبرد، غ.ر.، 1393. برآورد میزان توده زنده کفزیان خلیج فارس و دریای عمان به روش مساحت جاروب شده (1393-1391). موسسه تحقیقات شیلات ایران. 308 صفحه.
12
Anderson, F.E.; Engelke, R.; Jarrett, K.; Valinassab, T.; Mohamed,K.S.; Asokan, P.K.; Zacharia, P.U.; Nootmorn, P., Chotiyaputta, C. and Dunning, M., 2011. Phylogeny of the (Sepia pharaonis) species complex (Cephalopoda: Sepiida) based on analyses of mitochondrial and nuclear DNA sequence data. J of Mollusc Study. Vol. 77, pp: 65-75.
13
Boyle, P.R., 1983. Cephalopod life cycles, vol. 1, Species accounts. Academic Press, London, Ecirrhosa. pp: 365-386.
14
Caddy, J.F. and Rodhouse, P.G., 1998. Cephalopod and groundfish landings: evidence for ecological change in global fisheries? Reviews in fish biology & fisheries. Vol. 8, pp: 431-444.
15
Chembian, A.J. and Mathew, S., 2011. Migration and spawning behavior of the pharaoh cuttlefish (Sepia pharaonis) Ehrenberg, 1831 along the south-west coast of India. Indian Journal of Fisheries. Vol. 58, No. 3, pp: 1-8.
16
FAO. 2009. Fishery Statistics Yearbook. Catches and Landings. FAO, Rome. Vol. 74, 63 p.
17
FAO. 2012. Global aquaculture and capture/cuttlefish. http://www.fao.org/fishery/statistics/en.
18
FAO. 2014. The state of world fisheries and aquaculture, Rome. 223 p.
19
James, P.S.B.R.; Gupta, T.R.C. and Sanbogue, S.L., 1986. Some aspects of biology of ribbonfish Triciurus lepturus. J. Mar. Biol. Ass. Indian. Vol. 290, pp: 120-137.
20
Martins,A.S.andHaimovici,M.,1996. Distribution, abundance & biological interactions of the cutlass fish Trichiuruslepturus in the southern Brazil subtropical convergence ecosystem. Fisheries research. Vol. 30, pp: 217-227.
21
Nair, K.P.; Srinath, M.; Meiyappan, M.M.; Rao, K.S.; Sarvesan, R.; Vidyasagar, K.; Sundaram, K.S.; Rao, G.S.; AUpton, P.; Natarajan, P.; Radhakrishnan, G.; Sunilkumar, K.; Narasimham, K.R.; Balan, K.; Kripa, V. and Sathianandan, T.V., 1993. Stock assessment of the pharaohStock assessment of the pharaoh cuttlefish Sepia pharaonis. Indian journal of fisheries. Vol. 40, pp: 85-94.
22
Petrakis, G.; MacLennan, D.N. and Newton, A.W., 2001. Day-night and depth effects on catch rates during trawl surveys in the North Sea. ICES Journal of Marine Science. Vol. 58, pp: 50-60.
23
Raeisi, H.; Hosseini, S.A.; Paighambari, S.Y.; Taghavi, S.A.A. and Davoodi, R., 2011. Speciecomposition and depth variation of cutlass fish (Trichiurus lepturus L. 1785) trawl by catch in the fishing grounds of Bushehr waters. Persian Gulf. Vol. 10, No. 76, pp: 17610-17619.
24
Sparre, P. and Venema, S.C., 1992. Introduction to tropical fish stock assessment. Part:1, Manual FAO Fisheries Technical Paper. 376 p.
25
Swain, D.P. and Wade, E.J., 1993. Density-dependent geographic distribution of Atlantic cod (Gadus morhua) in the southern Gulf of St Lawrence. Canadian Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 50, pp: 725-733.
26
Valinassab, T.; Daryanabard, R.; Dehghani, R. and Pierce, G.J. 2006. Abundance of demersal resources in the Persian Gulf & Oman Sea. J of marine biological association of the United Kingdom. Vol. 86, No. 1, pp: 1455-1462.
27
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات پرورش ماهیان خاویاری در محیط محصور (پن) بر کیفیت آب در خلیج گرگان
تحقیقات حاضر به منظور بررسی اثرات پرورش ماهیان خاویاری در محیط محصور (پن) خلیج گرگان برکیفیت آب در مدت یکسال از مرداد 1394 تا تیر 1395صورت گرفت. 3 محیط محصور مستقر در جزیره آشوراده - بندر ترکمن به عنوان شاخص مورد ارزیابی قرار گرفت. ماهیان خاویاری صید شده از دریا به ترتیب با وزن متوسط و تراکم متوسط 12/28±21/00 کلیوگرم و 21/66±25/00 قطعه در هر حصار ذخیره سازی شدند. میزان کل غذای ورودی طی دوره آزمایشی ثبت گردید. 5 ایستگاه با 3 تکرار شامل مرکز حصار، شعاع 5، 25، 50 و 100 متری از حصار درنظر گرفته شد. تغییرات عوامل فیزیک و شیمیایی آب مورد ارزیابی قرار گرفت. نتایج حاصل از تغییرات فصلی عوامل فیزیک و شیمیایی آب نشان داد که فاکتورهای شفافیت، کدورت، میزان کلروفیل آلفا و سیانو باکتر، فسفر و فسفات اختلاف معنی دار را در بین فصول نشان ندادند (0/05<p). نتایج نشان داد که پرورش ماهی در حصار سبب تغییرات معنی داری در فاکتورهای مصرف اکسیژن شیمیایی، مصرف اکسیژن بیولوژِیک، میزان نیتریت، آمونیاک کل، کل مواد جامدمعلق داشت (0/05>p). هم چنین ثابت شد، با فاصله گرفتن از حصار میزان گل آلودگی و میزان کلروفیل آلفا کاهش و میزان کدورت افزایش می یابد. بیش ترین میزان کلروفیل آلفا، مصرف اکسیژن بیولوژیک، مصرف اکسیژن شیمیایی، نیتریت و آمونیاک در ایستگاه 25 متری بود که با سایر ایستگاه ها اختلاف معنی داری را نشان داد (0/05>p). مطالعه هم چنین ثابت کرد تغذیه می تواند باعث افزایش میزان فسفر در محدوده حصار شود گرچه معنی دار نبود (0/05<p). نتایج مطالعه نشان داد بیش ترین تاثیر پرورش ماهی بر کیفیت آب در شعاع 5 متری از حصار بود.
http://www.aejournal.ir/article_69912_d0733fb3bf53d42391c535533fd1ae36.pdf
2018-06-22
217
230
کیفیت آب
ماهیان خاویاری
حصار
خلیج گرگان
دریای خزر
محمد
فرهنگی
s.farhangi@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
LEAD_AUTHOR
سیدعباس
حسینی
hoseini_abbas@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
حجت الله
جعفریان
hojat.jafaryan@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشگاه گنبد کاووس
AUTHOR
رسول
قربانی
rasulghorbani@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
محمد
هرسیج
m_harsij80@yahoo.com
5
گروه شیلات، دانشگاه گنبد کاووس
AUTHOR
محمد
سوداگر
sudagar_m@yahoo.com
6
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
سیدسحاب
میرا
7
اداره کل حفاظت و محیط زیست استان گلستان
AUTHOR
عبدالحلیم
بلاش
8
اداره کل حفاظت و محیط زیست استان گلستان
AUTHOR
ستاری، م.، 1382. ماهی شناسی. جلد 2. انتشارات حق شناس. 655 صفحه.
1
محمدخانی، ح.؛ طاهری، ح.؛ امینی، ک. و منصوری، ب.، a 1393. ﻣﺪلﺳﺎزی ﺗﻮزﯾﻊ ﻣﮑﺎﻧﯽ آﻟﻮدﮔﯽﻫﺎی ﻣﺨﺘﻠﻒ و ارزﯾﺎﺑﯽ ﻗﺎﺑﻠﯿﺖ آﺑﺰیﭘﺮوری درﺧﻠﯿﺞ ﮔﺮﮔﺎن. اولین همایش آبزی پروری نوین فرصت ها، چالش ها. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران، گرگان، 17 صفحه.
2
محمدخانی، ح.؛ طاهری، ح.؛ یلقی، س. و حامی طبری، ا.، b1393. ﻣﺪل سازی ﮐﯿﻔﯽ دوﺑﻌﺪی و ﻣﮑﺎنﯾﺎﺑﯽ آﺑﺰیﭘﺮوری در ﺧﻠﯿﺞ ﮔﺮﮔﺎن ﺑﺮاﺳﺎس ﺗﻮان ﺧﻮدﭘﺎﻻﯾﯽ. اولین همایش آبزی پروری نوین فرصت ها، چالش ها. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران، گرگان، 33 صفحه.
3
میردار، ج.؛ ارشدی، ع.؛ نکوهی، م.؛ شهریاری مقدم، م. و لطفی، م.، 1388. بررسی اثرات پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان در قفس های شناور بر کیفیت آب شرب مخزن چاه نیمه در منطقه سیستان. سومین همایش و نمایشاه تخصصی مهندسی محیط زیست، ایران، تهران.
4
Alpaslan, A. and Pulatsü, S., 2008. The effect of Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum, 1792) cage culture on sediment quality in Kesikköprü Reservoir, Turke. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 8, pp: 65-70.
5
APHA, 2003. Standard methods for examination of water and wastewater. American public health association, Washington DC. 154 p.
6
Apostolakia, E.A.; Tsagarakia, T.; Tsapakisa, M. and Karakassis, I., 2007. Fish farming impact on sediments and macro fauna associated with sea grass meadows in the Mediterranean. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 75, No. 3, pp: 408-416.
7
Ballali, S.; Hosseini, S.A.; Ghorbani, R.; Kordi, H. and Amooei Khoseini, E., 2013. Relationships between nutrients and chlorophyll-a concentration in the international Alma Gol Wetland, Iran. International Journal of Aquatic Biology. Vol. 12, pp: 68-75.
8
Belias, CH.V.; Bikas, V.G.; Dassenakis, M.J. and Scoullo, M.J., 2003. Environmental impacts of coastal aquaculture in eastern Mediterranean bays the case of astakos gulf, Greece. Environmental Science and Pollution Research. Vol. 10, No. 5, pp: 287-295.
9
Chapman, D., 1996. Water Quality Assessment E and FN spon, an imprint of Chapman and Hall. 2nd Edition.
10
Cornel, G.E. and Whoriskey, F.G., 1993. The effects of rainbow trout cage culture on the water quality, zooplankton, benthos and sediment of Lac du Passage, Quebec. Aquaculture. Vol. 109, pp: 101-117.
11
Hallare, A.V.; Factor, P.N.; Santos, E.K. and Hollert, H., 2009. Assessing the Impact of Fish Cage Culture on Taal Lake (Philippines) Water and Sediment Quality Using the Zebrafish Embryo Assay. Philippine Journal of Science. Vol. 138, No. 1, pp: 91-104.
12
Jahani, N.; Nabavi, S.N.B.; Dehghan Madiseh, S.; Mortezaie, S.R.S. and Fazeli, N., 2012. The effect of marine fish cage culture on benthic communities using BOPA index in Ghazale Creek (Persian Gulf). Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 11, No. 1, pp: 78-88.
13
Khodami, S.; Attaran Fariman, G.; Ghasemzadeh, J. and Mortazavi, M. S., 2012. Comparison of different nitrogen compounds in three different environments of the Gwatar shrimp farms complex in the Gwatar Gulf region (Baluchistan-Iran). Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 10, No. 4, pp: 663-677.
14
Longgen, G. and Zhongjie, L., 2003. Effects of nitrogen and phosphorous from fish cage culture on the communities of a shallow lake in middle Yangtze River basin of Chain. Aquaculture. Vol. 226, pp: 201-212.
15
Mente, E.; Pierce, G.S.; Maria Begoña Santos, M. and Neofito, C., 2006. Effect of feed and feeding in the culture of salmonids on the marine aquatic environment: a synthesis for European aquaculture. Aquaculture International. Vol. 14, No. 5, pp: 499-522.
16
Mrcelic, G.J. and Sliskovic, M., 2010. The impact of fish cages on water quality in one fish farm in Croatia. World Academy of Science, Engineering and Technology. Vol. 4, pp: 08-25.
17
Mwachiro, E.C.; Makilla, D.; Bett, D.K. and Ndeje, G.K., 2012. A Comparative study of cage and earthen pond culture of Oreochromis Jipe, in Lake Jipe, Taita/Taveta district, Kenya. Global Advanced Research Journal of Agricultural Science. Vol. 1, No. 7, pp: 163-181.
18
Nyanti, L.; Hii, K.M; Sow, A.; Norhadi, I. and Ling, T.Y., 2012. Impacts of aquaculture at different depths and distances from cage culture sites in Batang Ai Hydroelectric Dam Reservoir, Sarawak, Malaysia. World Applied Sciences Journal. Vol. 19, No. 4, pp: 451-456.
19
Phillips, M.J; Beveridge, M.C.M. and Ross, L.G., 1985. The environmental impact of salmonids Cage culture on Inland fisheries: present status and future trends. Journal Fish Biology. Vol. 27, pp: 123-137.
20
Philipose, K.K.; Krupessha, S.R.; Jayasree, L.; Ayasree, L.; Damodaran, D.G.; Syadarao, G.; Vaidya, N.G.; Mhaddolkar, S.S; Sadhu, N. and Dub, P, 2012. Observations on variations in physic chemical water parameters of marine fish cage farm off Karwar. Indian Journal Fish. Vol. 59, No. 1, pp: 83-88.
21
Rodríguez-Gallegoa, L.; Meerhoffa, E.; Poerschc, L.; Aubriota, L.; Fagettib, C.; Vitancurtb, J. and Cond, D., 2008. Establishing limits to aquaculture in a protected coastal lagoon: Impact of Farfantepenaeus paulensis pens on water quality, sediment and benthic biota. Aquaculture. Vol. 277, No. 1-2, pp: 3-30.
22
Sanz-Lázaro, C. and Marín, A., 2011. Diversity patterns of benthic macrofauna caused by marine fish farming. Diversity. Vol. 3, pp: 176-199.
23
Varghese, M.; Joseph, S.; Joseph, I.; Ignatius, B.; Manisseri, M.K.; Thomas, V.J.; and Sydarao, G., 2010. Preliminary studies on the impact of open sea cage culture of Lates calcarifer (Bloch) on the planktonic and benthic fauna off Cochin, Kerala. Indian J. Fish. Vol. 57, No. 3, pp: 75-77.
24
Walters, G.L., 1989. Hach water analysis handbook. Hach Company, Colorado, USA.
25
ORIGINAL_ARTICLE
بهینه سازی استحصال کیتین و کیتوزان خالص از پوسته کیتینی گونه های Litopenaeus vannamei و Portunus pelagicus
با بهینه سازی روش های استخراج ترکیبات دریایی، می توان درصد بالایی از کیتین و کیتوزان را از پسماند و پوسته های گونه های ارزشمند دریایی جهت مصارف دارویی و صنعتی استحصال نمود. در این پژوهش از پوسته ضایعات میگوی (Litopenaeus vannamei) و خرچنگ (Portunus pelagicus ) به عنوان دور ریز محصولات فرآوری شده، جهت استخراج این دو ترکیب با ارزش استفاده شده است. برای استحصال کیتین از دو روش استفاده شد. در روش اول پروتئین زدایی با NaOH 10%، کانی زدایی با HCL 15%، چربی زدایی با NaOH 15% و رنگ بری با استون انجام گرفت. در روش دوم رنگ بری با هیپوکلریت سدیم 3% ، کانی زدایی با HCLیک مولار و سپس پروتئین زدایی توسطNaOH یک مولار انجام شد. با استیل زدایی کیتین حاصله، کیتوزان به دست آمد. درصد استحصال کیتین از پوسته میگو و خرچنگ با روش اول بهترتیب 75/3% و 58% و با روش دوم به ترتیب 30/26% و 37/8% محاسبه شد. روش اول استخراج کیتین، برای تولید کیتوزان انتخاب شد. درصد کیتین موجود در چنگال و پاهای راه روی خرچنگ (0/07±58%) و بندهای بدن میگو (0/12±81%) بیش تر از پوسته بخش کاراپاس بود (0/05>P). درصد استحصال کیتوزان از پوسته میگو 29/3% و از پوسته خرچنگ 31/2% بود. درجه داستیلاسیون کیتوزان به دست آمده از پوسته های کیتینی دوگونه در این تحقیق، 45% (پوسته میگو) و 52/63% ( پوسته خرچنگ) محاسبه شد. استفاده از دور ریزهای میگو و خرچنگ در جهت تولید کیتین و کیتوزان علاوه بر حفظ محیط زیست و حذف پسماند، می تواند منجر به تولید محصولات با ارزش اقتصادی شود.
http://www.aejournal.ir/article_70410_0063e7e8574d16b5b36e7adb36b248e3.pdf
2018-06-22
231
238
کیتین
کیتوزان
Litopenaeus vannamei
Portunus pelagicus
Persian Gulf
سارا
هردانی
sarahardani1368@gmail.com
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، استان خوزستان، خرمشهر
AUTHOR
بیتا
ارچنگی
bita.archangi@gmail.com
2
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، استان خوزستان، خرمشهر
LEAD_AUTHOR
حسین
ذوالقرنین
zolgharnein@kmsu.ac.ir
3
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، استان خوزستان، خرمشهر
AUTHOR
اسحاق
زمانی
zamani@kmsu.ac.ir
4
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر، استان خوزستان، خرمشهر
AUTHOR
پورمراد، ف.؛ ابراهیمی، پ.؛ ابراهیم زاده، م.ع.؛ هنری، س. و اورنگیان، م.، 1384. تعیین درجه داستیلاسیون کیتوسان تهیه شده از پوست میگو. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندان. دوره 15، شماره 50، صفحات 27 تا 34.
1
خاکشور، م.ص. و پازوکی، ج.، 1395. بررسی و مقایسه خواص میکروبی کیتین و کیتوزان استخراج شده از بخش های مختلف اسکلت خارجی خرچنگ شناگر آبی (Portunus segnis) از منطقه بندرعباس. مجله زیست شناسی دریا. دوره 8، شماره 1، صفحات 9 تا 20.
2
خاکشور، م. ص. و پازوکی، ج.، 1393. استخراج ترکیبات کیتین کیتوزان موجود در اسکلت خارجی خرچنگ شناگر آبی (Portunus segnis Forskal, 1775 ) منطقه بندرعباس- خلیج فارس. محیط زیست جانوری. دوره 6، شماره 1، صفحات 11 تا 18.
3
خاکشور، م.ص.؛ پازوکی، ج.؛ طادی، ف. و طاهری، س.، 1391. مقایسه میزان کیتین و کیتوزان استخراج شده در بین جنس های نر و ماده، اندام های مختلف و فصول متفاوت صید خرچنگPortunus Segnis ، خلیج فارس. همایش ملی فرآورده های طبیعی و گیاهان دارویی. مقالات دانشگاه علوم پزشکی خراسان شمالی.
4
طاهری، ع.؛ سیفان، ا. و جلالی نژاد، س.، 1392. اثر ضدمیکروبی و ضدقارچی کیتوزان محلول در اسید و آب پوسته میگوی سفید هندی (Fenneropenaeus indicus). مجله دانشگاه علوم پزشکی فسا. سال 3، شماره 1، صفحات 49 تا 55.
5
غیاث الدین، ع.؛ شجاع الساداتی، س.ع. و واشقانی فراهانی، ا.، 1390. اصلاح و بهینه سازی فرایند استخراج کیتین از پوسته میگو. نشریه شیمی و مهندسی شیمی ایران. دوره 30، شماره 1، صفحات 1 تا 9.
6
کرباسی، ا.؛ برزگر. ح. و مصباحی، غ.، 1384. مقایسه کیتوزان تولیدی از پوسته میگو به عنوان قوام دهنده درسس مایونز با کیتوزان تجاری و CMC. فصلنامه علوم و صنایع غذایی ایران. دوره 2، شماره 3، صفحات 67 تا 79.
7
موسوی نسب،م.؛موسوی نسب،س.س.؛مصباحی،غ.وجمالیان، ج.، 1393. ارزیابی خصوصیات کیفی کیتوزان تولیدی از پوسته میگو و کیتوزان تجاری از خرچنگ. فصلنامه علوم و صنایع غذایی. شماره 45، دوره 11، صفحات 163 تا 174.
8
Abdou, E.S.; Nagy, K.S.A. and Elsabee, M.Z., 2008. Extraction and characterization of chitin and chitosan from local sources. Bioresource. Technolog. Vol. 99, No. 5, pp: 1359-1367.
9
Alishahi, A.; Mirvaghefi, A.; Tehrani, M.R.; Farahmand, H.; Shojaosadati, S.A.; Dorkoosh, F.A. and Elsabee, Z., 2001. Enhancement and characterization of chitosan Extraction from the wastes of shrimp packaging plants. Journal of Polymers and the Environment. Vol. 19, pp: 776-783.
10
A.O.A.C. 1990. Official methods of Association of official Analytical Chemist Washington, D.C.
11
Atanda, S.A. and Sumaila, P.P.M., 2016. Development and Characterization of Chitosan from Shrimp Exoskeleton. Academica Editores: Acta Velit. Vol. 2, No. 3, pp: 2-12.
12
Beaulieu, C., 2005. Chitin and Chitosan. Marinard Biotech. pp: 1-7.
13
Bolat, Y.; Bilgin, S.; Günlü, A.; Izci, L.; Koca, S.B.; Çetinkaya, S. and Koca, H.U., 2010. Chitin-Chitosan Yield of Freshwater Crab (Potamon potamios, Olivier 1804) Shell. Pakistan Veterinary Journal. Vol. 30, pp: 227-231.
14
Burrows, F.; Louime, C.M. and Onokpise, O., 2007. Extraction and Evaluation Abasing of chitosan from Crab Exoskeleton as a Seed Fungicide and Plant Growth Enhancer. American-Eurasian Journal of Agricultural & Environmental Sciences. Vol. 2, pp: 103-111.
15
Cho, H.R.; Chang, D.S.; Lee, W. D.; Jeong, E.T. and Lee, E.W., 1998. Utilization of chitosan hydrolysate as a natural food preservative for fish meat paste products. Korean Journal of Food Science and Technology. Vol. 30, pp: 817-822.
16
Cho, Y.I.; No, H.K. and Meyers, S.P., 1998. Physicochemical characteristics and Functional properties of various commercial chitin and chitosan products. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 46, pp: 3839-3843.
17
Divya, K.; Rebello, S. and Jisha, M.S., 2014. A Simple and Effective Method for Extraction of High Purity Chitosan from Shrimp Shell Waste. Institute of Research Engineers and Doctors. Proc. Of the Intl. Conf. On Advances in Applied Science and Environmental Engineering- ASEE.
18
Felicity, B.; Clifford, L.; Michael, A. andOghenekome, O., 2007. Extraction and evaluation of chitosan from exoskeleton as a seed fungicide and plant growth enhancer American-Eurasian. American-Eurasian Journal of Agricultural & Environmental Sciences. Vol. 2, pp: 103-111.
19
Hossain, M.S. and Iqbal, A., 2014. Preparation and characterization of chitosan from shrimp waste. Journal of Bangladesh Agricultural research. Vol. 12, pp: 153-160.
20
Jiang, T.D., 2001. Chitosan; Chemical industry press: Beijing, China. Vol. 91, pp: 100-108.
21
Kanauchi, O.; Deuchi, K.; Imasato, Y.; Shizukuishi, M. and Kobayashi, E., 1995. Mechanism for the inhibition of fat digestion by chitosan and for the synergistic effect of ascorbate. Biosci Biotechnol Biochem. Vol. 59, No. 5, pp: 786-790.
22
Kamala, K.; Sivaperumal, P. and Rajaram, R., 2013. Extraction and Characterization of Water Soluble Chitosan from Parapeneopsis Stylifera Shrimp Shell Waste and Its Antibacterial Activity. International Journal of Scientific and Research Publications. Vol. 3, No. 4, pp: 1-8.
23
Kaya, M.; Baran, T. and Karaarslan., 2015. A new method for fast chitin extraction from shells of crab, crayfish and shrimp. Natural Product Research: Formerly Nat. Prod. Lett. pp: 1-4.
24
Khor, E., 2001. Chitin: fulfilling a biomaterials promise. Amsterdam: Elsevier Science. 10 p.
25
Kumari, S.; Rath, P. and Kumar, A.S.H., 2016. Chitosan from shrimp shell (Crangon crangon) and fish scales (Labeorohita): Extraction and characterization. African. Journal of Biotechnology. Vol. 15, pp: 1258-1268.
26
Kurita, K., 2006. Chitin and chitosan: Functional biopolymers from marine crustaceans. Marine Biotechnology. Vol. 8, pp: 203-226.
27
Lertsutthiwong, P.; How, N.C.; Chandrkrachang, S.F. and Stevens, W., 2002. Effect of Chemical Treatment on the Characteristics of Shrimp Chitosan. Journal of Metals, Materials and Minerals. Vol. 12, No. 1, pp: 11-18.
28
Limpanavech, P.; Chaiyasuta, S.; Vongpromek, R.; Pichyangkura, R.; Khunwasi, Ch.; Chadchawan, S.; Lotrakul, P.; Bunjongrat, R.; Chaidee, A. and Bangyeekhun, T., 2008. Chitosan effects on floral production, gene expression and anatomical changes in the Dendrobium orchid. Scientia Horticulturae. Vol. 116, pp: 65-72.
29
Mahdy Samar, M.; El-Kalyoubi, M.H.; Khalaf, M.M. and Abd El-Razik, M.M., 2013. Physicochemical, functional, antioxidant and antibacterial properties of chitosan extracted from shrimp wastes by microwave technique. Annals of Agricultural and Science. Vol. 58, pp: 33-41.
30
Mirzadeh, H.; Yaghoubi, N.; Amanpour, S.; Ahmadi, H.; Mohagheghi, M.A. and Hormozi, F., 2002. Preparation of chitosan derrived from shrimp’s shell Persian Gulf as Blood Hemostasis Agent. Iranian Polymer Journal. Vol. 11, pp: 63-68.
31
Muslim, T.; Rahman, M.H.; Begum, H.A. and Rahman, M.A., 2013. Chitosan and carboxymethyl chitosan from fish scales of Labeo rohita. Dhaka University Journal and Science. Vol. 61, pp: 145-148.
32
No, H.K.; Cho, Y.I.; Kim, H.R. and Meyers, S.P., 2000. Effective deacetylation of chitin under conditions of 15 psi/121oC. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 48, pp: 2625-2627.
33
No, H.K.; Lee, S.H.; Park, N.Y. and Meyers, S.P., 2003. Comparison of physichemical, binding, and antibacterial properties of chitosans prepared without and with deproteinization process. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 51, pp: 7659-7663.
34
Pariser, E.R. and Lombordi, D.P., 1988. A guide to the research literature chitin, Source book. Plenum Press. New York, U.S.A. 560 p.
35
Revathi, M.; Saravanan, R. and Shanmugam, A., 2012. Production and characterization of chitinase from Vibrio species, a head waste of shrimp Metapenaeus dobsonii (Miers, 1878) and chitin of Sepiella inermisOrbign, 1848. Advances in Bioscience and Biotechnology. Vol. 3, pp: 392-397.
36
Roberts, G.A.F., 1992. Chitin Chemistry. Macmillan. London.
37
Rout, S.K., 2001. Physicochemical, functional, and spectroscopic analysis of crawfish chitin and chitosan as affected by process modification. Louisiana State University: Baton Rouge, LA, USA.
38
Shahidi, F. and Synowiecki, J., 1991. Isolation and characterization of nutrient and value-added products from snow crab (Chionoecetes opilio) and shrimp (Pandalus borealis) processing discards. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 39, pp: 1527-1532.
39
Synowiecki, J. and Al-Khateeb, N.A., 2003. Production, properties,and some new applications of chitin and its derivatives. Critical Reviews in Food Science and Nutrition. Vol. 43, pp: 145-171.
40
Tajik, H.; Moradi, M.; Razavi Rohani, S.M.; Erfani, A.M. and Shokouhi Sabet Jalali, F., 2008. Preparation of chitosan from brine shrimp (Artemia uremiana) cyst shells and effects of different chemical processing sequences on the physicochemical and functional properties of the product. Molecules. Vol. 10, pp: 1263-1274.
41
Wang, X. and Xing, B., 2007. Importance of structural makeup of biopolymers for organic contaminant sorption. Environmental Science and Technology. Vol. 41, pp: 3559-3565.
42
Webster, C.; Onokpise, O.; Abazinge, M.; Muchovej, J.; Johnson, E. and Louime, C., 2014. Turning waste in to usable products: A case study of extracting chitosan from blue crab. American Journal of Environmental Science. Vol. 10, pp: 357-362.
43
Yen, M.T.; Yang, T.J. and Mau, J.L., 2009. Physicochemical characterization of chitin and chitosan from crab shells. Carbohydrate Polymers. Vol. 75, pp: 15-21.
44
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر آرتمیای غنی شده با دو پروبیوتیک باسیلوس سابتیلیس و پدیوکوکوس پنتوساسئوس بر شاخص های رشد و بقا و ترکیبات لاشه پست لارو میگوی پا سفید غربی (Litopenaeus vannamei)
استفاده از پروبیوتیک ها در آبزی پروری نشان داده است که می تواند بهره وری بیش تری را در این صنعت ایجاد کند. با این هدف، در این تحقیق اثر استفاده از دو گونه باکتریایی باسیلوس سابتیلیس و پدیوکوکوس پنتوساسئوس به عنوان پروبیوتیک روی شاخص های رشد، بقا و ترکیبات بیوشیمیایی لاشه پست لارو میگوی وانامی بررسی شد. به این منظور تعداد سه تیمار آزمایشی، هر کدام سه تکرار شامل تیمار باسیلوس (B)، تیمار پدیوکوکوس (P) و تیمار تلفیقی باسیلوس و پدیوکوکوس (BP) از طریق غنی سازی آرتمیا مورد مصرف لاروهای میگوی وانامی از مرحله مایسیس III تا مرحله 15PL قرار گرفتند. به عنوان تیمار شاهد نیز از آرتمیای غنی نشده با پروبیوتیک برای تغذیه لاروها استفاده شد. در پایان آزمایش نتایجشاخص های رشد و بقا یک روند افزایشی تحت تاثیر مصرف پروبیوتیک را به طور معنی داری (0/05>P)نشان دادند و بیش ترین تاثیر آن نیز در تیمار تلفیقی نمود پیداکرد. اما در رابطه با تاثیر مصرف پروبیوتیک ها بر فاکتورهای بیوشیمیایی لاشه میگونتایج اختلاف معنی داری را میان تیمارهای مختلف نشان ندادند. در پایان با توجه به نتایج کسبشده در این آزمایش می توان گفت که باکتری های مذکور به عنوان پروبیوتیک توانستند از لحاظ ارتقا رشد و بهبود بهره وری تولید پست لارو میگوی وانامی تاثیرگذار باشند بدون این که تاثیر به خصوصی رویفاکتورهای بیوشیمیایی بدن بگذارند.
http://www.aejournal.ir/article_70584_407ec83978d4aedc98ca9ab3dd62e3f4.pdf
2018-06-22
239
244
پروبیوتیک
وانامی
آنالیز لاشه
رشد و بقا
امین
هاشمی پناه
amin.hashemi69@ut.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
غلامرضا
رفیعی
ghrafiee@ut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
احسان
نیکبخت
ehsannikbakht71@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
سپیده
بزرگی
fatemeh.moshayedi@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
احمدی، س.، 1393. مقایسه تاثیر پروبیوتیک پدیوکوکوس اسیدی لاکتیسی و لاکتوکوکوس لاکتیس بر شاخص های رشد، بقا و فعالیت های آنزیمی میگوی پاسفید غربی (Litopenaeus vannamei). رساله دکتری، شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم تحقیقات. 125 صفحه.
1
مصلحی، ف.؛ ستاری، م.؛ خوش خلق، م.ر.؛ شناورماسوله، ع.ر. و عباسعلی زاده،ع.ر.،1393. اثر پروبیوتیک پدیوکوکوس پنتوساسئوس (Pediococcus pentosaceus)بر عوامل رشد و ایمنی تاس ماهی سیبری (Acipenser baerii). مجله علوم و فنون شیلات. دوره 3، شماره 4، صفحات 81 تا 92.
2
AOAC (Association of Official Analyatical Chemists). 1998. Official Methods of Analysis, 16 ͭ ͪ ed. AOAC, Washington, DC, USA. 1141 p.
3
Boonthai, T.; Vuthiphandchai, V. and Nimrat, S., 2011. Probiotic bacteria effects on growth and bacterial composition of black tiger shrimp (Penaeus monodon). Aquac. Nutr. Vol. 17, pp: 634-644.
4
Campbell, R.; Adams, A.; Tatner, M.F.; Chair, M. and Sorgeloos, P., 1993. Uptake of Vibrio anguillarum vaccine by Artemia salina as a potential oral delivery system to fish fry. Fish Shellfish Immun. Vol. 3, pp: 451-459.
5
Castex, M.; Chim, L.; Pham, D.; Lemaire, P.; Wabete, N.; Nicolas, J.L.; Schmidely, P. and Mariojouls, C., 2008. Probiotic P. acidilactici application in shrimp Litopenaeus stylirostris culture subject to vibriosis in New Caledonia. Aquaculture. Vol. 275, pp: 182-193.
6
Dixon, B.A.; Van Pucke S.O.; Chair, M.; Demasque, M.; Nelis, H.J.; Sorgeloos, P. and De Leenheer, A.P., 1995. Bioencapsulation of the antibacterial drug safrafloxacin in nauplii of the brine shrimp Artemia franciscana. J. Aquat. Anim. Health. Vol. 7, pp: 42-45.
7
Ergun, S.; Yigit, M. and Turker, A., 2003. Growth and feed consumption of young rainbow trout exposed to different photoperiods. Israeli journal of Aquaculture, Bamidge. Vol. 55, No. 2, pp: 132-138.
8
Fernandez, R.; Sridhar, M. and Sridhar, N., 2011. Effect of lactic acid bacteria administered orally on growth performance of Penaeus indicus (H. Milne Edwards) juveniles. Res J Microb. Vol. 6, pp: 466-479.
9
Fuller, R., 1989. Probiotics in man and animal. J. Appl. Bacteriol. Vol. 66, pp :365-378.
10
Gatesoupe, F.J., 1994. Lactic acid bacteria increase the resistance of turbot larvae, Scophthalmus maximus, against pathogenic Vibrio. Aquat. Living Resour. Vol. 7, pp: 277-282.
11
Gatesoupe, F.J., 1999. The use of probiotics in aquaculture. Aquaculture. Vol. 180, pp: 147-165.
12
Hai, N.V.; Buller, N. and Fotedar, R., 2009b. The use of customised probiotics in the cultivation of western king prawns. Fish Shellfish Immunol. Vol. 27, pp: 100-104.
13
Hai, N.V.; Buller, N. and Fotedar, R., 2010b. Encapsulation capacity of Artemia nauplii with customised probiotics foruse in the cultivation of western king prawns (Penaeus latisulcatus). Aquac. Res. Vol. 41, pp: 893-903.
14
Irianto, A. and Austin, B., 2002. Probiotics in aquaculture. J. Fish Dis. Vol. 25, pp: 633-642.
15
Jamali, H.; Imani, A.; Abdollahi, D.; Roozbehfar, R. and Isari, A., 2015. Use of Probiotic Bacillus spp. in Rotifer (Brachionus plicatilis) and Artemia (Artemia urmiana) Enrichment: Effects on Growth and Survival of Pacific White Shrimp, Litopenaeus vannamei, Larvae. Probiotics and Antimicro. Prot. Vol. 7, pp: 118-125.
16
Li, P.; Burr, G.S.; Goff, J.; Whiteman, K.W.; Davis, K.B.; Vega, R.R.; Neill, W.H. and Gatlin, D.M., 2005. A preliminary study on the effects of dietary supplementation of brewers yeast and nucleotides, singularly or in combination, on juvenile red drum (Sciaenops ocellatus). Aquac. Res. Vol. 36, pp: 1120-1127.
17
McIntosh, D.; Samocha, T.M.; Jones, E.R.; Lawrence, A.L.; McKee, D.A.; Horowitz, S. and Horowitz, A., 2000. The effect of a commercial bacterial supplement on the high-density culturing of Litopenaeus vannamei with a low-protein diet in an outdoor tank system and no water exchange. Aquac. Eng. Vol. 21, pp: 215-227.
18
Montero, D.; Mathlouthi, F.; Tort, L.; Afonso, J.M.; Torrecillas, S.; Fernandez-Vaquero, A.; Negrin, D. and Izquierdo, M.S., 2010. Replacement of diatary fish oil by vegetable oils affects humoral immunity and expression of pro-inflammatory cytokines genes in gilthead sea bream (Sparus aurata). Journal of Fish and Shellfish Immunology. Vol. 29, pp: 1073-1081.
19
Moriarty, D.J.W., 1998. Control of luminous Vibrio species in penaeid aquaculture ponds. Aquac. Vol. 164, pp: 351-358.
20
Newaj-Fyzul, A.; Adesiyun, A.A.; Mutani, A.; Ramsubhag, A.; Brunt, J. and Austin, B., 2007. Bacillus subtilis AB1 controls Aeromonas infection in rainbow trout. J. Appl. Microbiol. Vol. 103, pp: 1699-1706.
21
Patra, S.K. and Mohamed, K.S., 2003. Enrichment of Artemia nauplii with the probiotic yeast Saccharomyces boulardii and its resistance against a pathogenic Vibrio. Aquaculture International. Vol. 11, pp: 505-514.
22
Rengpipat, S.; Phianphak, W.; Piyatiratitivorakul, S. and Menasveta, P., 1998a. Effects of a probiotic bacterium on black tiger shrimp Penaeus monodon survival and growth. Aquaculture. Vol. 167, pp: 301-313.
23
Rollo, A.; Sulpizio, R.; Nardi, M.; Silvi, S.; Orpianesi, C. and Caggiano, M., 2006. Live microbial feed supplement in aquaculture for improvement of stress tolerance. Fish Physiol. Biochem. Vol. 32, pp: 167-177.
24
Saad, S.A.; Habashy, M.M. and Sharshar, M.K., 2009. Growth response of the freshwater prawn, Macrobrachium rosenbergii (De Man), to diets having different levels of Biogen. World Appl. Sci. J. Vol. 6, pp: 550-556.
25
Silva, E.F.; Soares, M.A.; Calazans, N.F.; Vogeley, J.L.; Do Valle, B.C.; Soares, R. and Peixoto, S., 2013. Effect of probiotic (Bacillus spp.) addition during larvae and postlarvae culture of the white shrimp Litopenaeus vannamei. Aquac. Res. Vol. 44, pp: 13-21.
26
Standen, B.T.; Rawling, M.D.; Davies, S.J.; Castex, M.; Foey, A. and Gioacchini, G., 2013. Probiotic Pediococcus acidilactici modulates both localized intestinal- and peripheral-immunity in tilapia (Oreochromis niloticus). Fish Shellfish Immunol. Vol. 35, No. 4, pp: 1097-104.
27
Thanh Tung, H.; Koshio, S. and Traifalgar, R.F., 2010. Effects of Dietary Heat-killed Lactobacillus plantarum on Larval and Post-larval Kuruma Shrimp, Marsupenaeus japonicus Bate. World Aquacul Society. Vol. 41, pp: 16-27.
28
Venkat, H.K.; Sahu, N.P. and Jain, K.K., 2004. Effect of feeding lactobacillus based probiotics on the gut micro flora, growth and survival of post larvae of Macrobranchium reosenbergii. Aquaculture Res. Vol. 35, pp: 501-507.
29
Verschuere, L.;Rombaut,G.;Sorgeloos,P.and Verstraete, W., 2000. Probiotic bacteria as biological control agents in aquaculture. Microbiol. Mol. Bio. Rev. Vol. 64, pp: 655- 671.
30
Villamil, L.; Reyes, C. and Martınez-Silva, M.A., 2014. In vivo and in vitro assessment of Lactobacillus acidophilus as probiotic for tilapia (Oreochromis niloticus, Perciformes: Cichlidae) culture improvement. Aqua. Res. 45, pp: 1116-1125.
31
Wang, Y.B. and Xu, Z.R., 2006. Effect of probiotics for common carp (Cyprinus carpio) based on growth performance and digestive enzyme activities. Anim. Feed Sci. Technol. Vol. 127, pp: 283-292.
32
Wang, Y.B., 2007. Effect of probiotics on growth performance and digestive enzyme activity of the shrimp Penaeus vannamei. Aquaculture. Vol. 269, pp: 259-264.
33
Watanabe, T.; Kitajima, C. and Fujita, S., 1983. Nutritional values of live organisms used in Japan for mass propagation of fish: a review. Aquacul. Vol. 34, pp: 115-143.
34
Yang, H.G.; Liu, Y.J.; Tian, L.L.; Liang, Y.G. and Lin, H.R., 2010. Effects of supplemental Lysin and Methionine on Growth Performance and body compsosition for Grass Carp (Ctenopharyngodon idella). Agricultural and Biological. Vol. 5, No. 2, pp: 222-227.
35
Yu, M.C.; Li, Z.J.; Lin, H.Z.; Wen, G.L. and Ma, S., 2009. Effects of dietary medicinal herbs and Bacillus on survival, growth, body composition, and digestive enzyme activity of the white shrimp. Aquaculture Int. Vol. 17, pp: 377-384.
36
Zhou, X.X.; Wang, Y.B. and Li, W.F., 2009. Effect of probiotic on larvae shrimp (Penaeus vannamei) based on water quality, survival rate and digestive enzyme activities. Aquaculture. Vol. 287, pp: 349-353.
37
Ziaei-Nejad, S.; Rezaei, M.H.; Takami, G.A.; Lovett, D.L.; Mirvaghefi, A.and Shakouri M., 2006. The effect of Bacillus spp. bacteria used as pro-biotics on digestive enzyme activity, survival and growth in the Indian white shrimp Fenneropenaeus indicus. Aquaculture. Vol. 252, pp: 516-524.
38
ORIGINAL_ARTICLE
تشخیص افتراقی 4 گونه از خانواده های Trochidae و Turbinidae در مناطق بین کشندی جزیره هرمز (خلیج فارس) براساس بررسی ساختار سوهانک با استفاده از میکروسکوپ الکترونی نگاره
سوهانک مشخصه مهمی در مطالعه سیستماتیکی گاستروپودها می باشد. هدف ازتحقیق حاضر، تشخیص افتراقی شکم پایان خانواده های Trochidae وTurbinidae در مناطق بین کشندی جزیره هرمز توسط مطالعه سوهانک با استفاده از میکروسکوپ الکترونی نگاره بود. نمونه برداری گاستروپودها در فصل بهار 1395 و از 6 ایستگاه در مناطق بین کشندی جزیره هرمز و عمق کم تر از یک متر انجام شد. نمونه ها بلافاصله فریز شده و به آزمایشگاه منتقل شدند. پس از مطالعه مورفومتریک، مواد آلی نمونه ها هضم و سوهانک جدا شده و توسط میکروسکوپ الکترونی مورد بررسی قرار گرفت. در مطالعه حاضر، 4 گونه شامل Trochus firmus، Trochus erithreus و Turbo radiatus شناسایی شدند. نوع سوهانک در گونه های Trochus firmus، Trochus erithreus و Lunella coronata ریپیدوگلوسان بود که شکل دندان های مرکزی، جانبی و حاشیه ای در این سه گونه تفاوت داشت.نوعسوهانکدرگونه Turbo radiatusتنیوگلوسانبود.نتایجتحقیق حاضر دلالت بر این دارد که بررسی سوهانک توسط میکروسکوپ الکترونی نگاره روش مناسبی برای شناسایی دقیقتر گاستروپودها می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_70716_bf3aaabf9825c6ec82fcdac022d96762.pdf
2018-06-22
245
250
شکم پایان
جزیره هرمز
سوهانک
شناسایی افتراقی
خلیج فارس
میکروسکوپ الکترونی نگاره
نسترن
حسین
tisana_2000@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
AUTHOR
مریم
عیدی
maryameidi@gmail.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
LEAD_AUTHOR
آریا
اشجع اردلان
a_ashjaardalan@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال، صندوق پستی: 181- 19735
AUTHOR
حسین زاده صحافی، ه.؛ دقوقی، ب. و رامشی، ح.، 1379. اطلس نرم تنان خلیج فارس، موسسه تحقیقات شیلات ایران.
1
عیسی پور، ا.؛ 1392. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه تربیت مدرس، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی.
2
میرزاباقری، د.؛ نبوی، س.م.؛ مهوری، ع. و کرمی، ک.، 1387. بررسی الگوی پراکنش شکم پایان در سواحل صخره ای جزیره هرمز. مجله پژوهش و سازندگی. دوره 21، شماره 3، صفحات 87 تا 95.
3
Amini Yekta, F.; Kiabi, B.; Shokri, M.R. and Ashja Ardalan, A., 2012a. Abundance and species richness of intertidal gastropods in Qeshm Island, the Persian Gulf, before and after cyclone GONU (2007-2008). Journal of the Persian Gulf. Vol. 3, pp: 25-31.
4
Amini Yekta, F.; Izadi, S. and Asgari, M., 2012b. Distribution of rocky intertidal molluscs in Qeshm Island, the Persian Gulf. INOC-CNRS, International Conference on Land-Sea Interactions in the Coastal Zone Jounieh, Lebanon. pp: 140-145.
5
Asgari, M.; Yekta, F.A. and Izadi, S., 2012. Dominant intertidal crustacean and gastropod species in Qeshm Island, Iran, northern Persian Gulf. Marine Biodiversity Records. Vol. 5, 87 p.
6
Barco, A.; Herbert, G.; Houart, R.; Fassio, G. and Oliverio, M., 2010. A molecular phylogenetic framework for the Muricidae, a diverse family of carnivorous gastropods. Molecular Phylogene and Evolution. Vol. 56, pp: 1025-1039.
7
Beria, F. and Deniz, A., 2007. Further SEM assessment of radular characters of the limpets Patella caerulea and P. rustica (Mollusca: Gastropoda) from Antalya Bay, Turkey. Turkish Journal of Zoology. Vol. 33, pp: 359-365.
8
Cruz, R.L. and Farina, M., 1998. Minerals of the radular apparatus of Falcidens sp. and the evolutionary implications for the phylum Mollusca. The Biological Bulletin. Vol. 194, pp: 224-230.
9
ORIGINAL_ARTICLE
فیلوژنی مولکولی Vetigastropoda براساس ژن های میتوکندریایی COI و S rRNA16
در این پژوهش روابط فیلوژنی بین گونه های کلاد Vetigastropoda در آب های ساحلی خلیج فارس مورد بررسی قرار گرفت. بدین منظور از ژن های میتوکندریایی COI و S rRNA16 استفاده شد. نمونه برداری در سال های 1392 و 1393 در سواحل صخرهای شمال خلیجفارس انجام گرفتو نمونه ها مورد شناسایی مورفولوژیک قرار گرفتند. سپس مراحل استخراج DNA، تکثیر قطعه ژنی زیر واحد I سیتوکروم اکسیداز (COI) و S rRNA16 و توالییابی انجام شد. در مجموع تعداد 9 توالی COI و 5 توالی S rRNA16 متعلق به 5 گونه از این کلاد به دستآمد که این توالی ها برای اولینبار از منطقه شمالی خلیج فارس گزارش شده است.آنالیزهایفیلوژنی با استفاده از نرم افزارهای MEGA6، PAUP و BEAST و با رسم درخت های فیلوژنی Maximum Likelihood، Maximum Parsimony و Bayesian صورت گرفت. نتایج نشان داد کلاد Vetigastropoda که از نظر رده بندی سنتی خانواده های Trochidae، Chilodontidae، Turbinidae و Fissurellidae از این مطالعه را، شامل می شود، مونوفیلتیک نمی باشد. به این ترتیب که گونه های متعلق به خانواده های Trochidae و Chilodontidae در یک کلاد مجزا از گونه های متعلق به دو خانواده Turbinidae و Fissurellidae قرار گرفتند. این مطلب نشان دهنده رابطه غیرخواهری میان این دو گروه بوده که بیانگر تفاوت بین دیدگاه رده بندی سنتی و رده بندی مولکولی است.
http://www.aejournal.ir/article_74155_f32cd7589709c66234821f31e21fabe2.pdf
2018-06-22
251
260
Vetigastropoda
COI
S rRNA16
فیلوژنی
سواحل صخره ای
خلیج فارس
منا
ایزدیان
izadian.mona@gmail.com
1
گروه تنوع زیستی و ایمنی زیستی، پژوهشکده محیط زیست و توسعه پایدار، سازمان حفاظت محیط زیست
LEAD_AUTHOR
حسین
ذوالقرنین
zolgharnein@kmsu.ac.ir
2
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر
AUTHOR
سیدمحمدباقر
نبوی
3
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم دریایی و اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر
AUTHOR
آریا
اشجع اردلان
a_ardalan@iau-tnb.ac.ir
4
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال، صندوق پستی: 181- 19735
AUTHOR
سیامک
یوسفی سیاه کلرودی
siamak_yousefi1@yahoo.com
5
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی ورامین، ایران
AUTHOR
حسین زاده صحافی، ه.؛ دقوقی، ب. و رامشی، ح.، 1379. اطلس نرم تنان خلیج فارس. موسسه تحقیقات شیلات ایران.
1
Bosch, D.; Dance, S.P.; Moolenbeek, R. and Oliver, P.G., 1995. Seashells of Eastern Arabia Motivate Publishing. pp: 24-186.
2
Collin, R., 2003. Phylogenetic relationships among calyptraeid gastropods and their implications for the biogeography of speciation. Systematic Biology. Vol. 52, No. 5, pp: 618-640.
3
Donald, K.M.; Kennedy, M. and Spencer, G.S., 2005. Cladogenesis as the result of long-distance rafting events in South Pacific Topshells (Gastropoda, Trochidae). Evolution. Vol. 59, No. 8, pp: 1701-1711.
4
Drummond, A.J.; Suchard, M.A.; Xie, D. and Rambaut, A., 2012. Bayesian phylogenetics with BEAUti and the BEAST 1.7 MolecularBiologyandEvolution. Vol. 29, pp: 1969-1973.
5
Elpidio, A.R. and Hebert, P.D.N., 2003. Testing the utility of partial COI sequences for phylogenetic estimates of gastropod relationships. Molecular Phylogenetics and Evolution. Vol. 29, pp: 641-647.
6
Folmer, O.; Black, M.; Hoeh, W.; Lutz, R. and Vrijenhoek, R., 1994. DNA primers for amplification of mitochondrial cytochrome c oxidase subunit I from diverse metazoan invertebrates. Molecular Marine Biology and Biotechnology. Vol. 3, pp: 294-299.
7
Frey, M. and Vermeij, G.J., 2008. Molecular phylogenies and historical biogeography of a circumtropical group of gastropods: implications for regional diversity patterns in the marine tropics. Mol. Phyl. Evol. Vol. 48, pp: 1067-1086.
8
Geiger, D.L. and Thacker, C.R., 2005. Molecular phylogeny of Vetigastropoda reveals non-monophyletic Scissurellidae, Trochoidea, and Fissurelloidea. Moll Res. Vol. 25, pp: 47-55.
9
Haase, M. and Zielske, S., 2015. Molecular phylogeny and a modified approach of character-based barcoding refining the taxonomy of New Caledonian freshwater gastropods. Molecular Phylogenetics and Evolution. Vol. 89, pp: 171-181.
10
Jones, D.A., 1986. A field guide to the sea shores of Kuwait and the Persian Gulf. University of Kuwait Blandford Press, Poole, Kuwait. 192 p.
11
Kano, Y., 2008. Vetigastropod phylogeny and a new concept of Seguenzioidea: independent evolution of copulatory organs in the deep-sea habitats. Zoologica Scripta. Vol. 37, pp: 1-21.
12
Knudsen, B.; Knudsen, T.; Flensborg, M.; Sandmann, H.; Heltzen, M.; Andersen, A.; Dickenson, M.; Bardram, J.; Steffensen, P.J.; Mønsted, S.; Lauritzen, T.; Forsberg, R.; Thanbichler, A.; Bendtsen, J.D.; Görlitz, L.; Rasmussen, J.; Tordrup, D.; Værum, M.; Ravn, M.N.; Hachenberg, C.; Fisker, E.; Dekker, P.; de Meza, J.; Hein, A.M.K.; Sinding, J.B.; Quorning, J.; Hvam, K.; Mikkelsen, S.; Liboriussen, P.; Grydholt, J.; Handberg, H.; Bundgaard, M.; Joecker, A.; Simonsen, M.; Nielsen, P.R.L.; Joecker, A.; Fleischer, P.;Jakobsen,J.;Juul,S.;Appelt,U.;Fejes,A.and Christensen,A.S.,2012. CLC sequence viewer, 6.7.1. CLC bio.
13
Larsson, A., 2014. AliView: a fast and lightweight alignment viewer and editor for large datasets, Bioinformatics. Vol. 30, No. 22, pp: 3276-3278.
14
Layton, K.; Martel, A.L. and Hebert, P.D.N., 2014. Patterns of DNA Barcode Variation in Canadian Marine Molluscs. PLoS One. Vol. 9, No. 4, pp: 1-9.
15
Lemey, P.; Salemi, M. and Vandamme, A.M., 2009. The Phylogenetic Handbook a Practical Approach to Phylogenetic Analysis and Hypothesis Testing. Cambridge University Press. Second Edition. 750 p.
16
Maddison, W.P., 1997. Gene Trees in Species Trees. Systematic Biology. Vol. 46, No. 3, pp: 523-536.
17
McPherson, M.J. and Møller, S.G., 2006. PCR Second Edition. Taylor & Francis Group. Second edition. 292 p.
18
Medina, M.; Weil, E. and Szmant, A.M., 1999. Examination of the Montastraea annularis species complex using ITS and COI sequences. Mar Biotechnol. Vol. 1, pp: 89-97.
19
Nylander, J.A.A., 2004. MrModeltest v2. Program distributed by the author. Evolutionary Biology Centre, Uppsala University, Sweden.
20
Palumbi, S.R.; Martin, A.; Romano, S.; McMillan, W.O.; Stice, L. and Grabowski, G., 1991. The Simple Fool's Guide to PCR, Version 2.0. Privately published, Univ. Hawaii.
21
Quintero-Galvis, J. and Castro, L.R., 2013. Molecular phylogeny of the Neritidae (Gastropoda: Neritimorpha) based on the mitochondrial genes cytochrome oxidase I and 16S rRNA. Acta biol. Colomb. Vol. 18, pp: 307-318.
22
Remigio, E.A. and Hebert, P.D.N., 2003. Testing the utility of partial COI sequences for phylogenetic estimates of gastropod relationships. Mol. Phylogent. Evol. Vol. 29, pp: 641-647.
23
Robin, A., 2008. Encyclopedia of Marine Gastropods, Ed. IKAN Unterwasser Archive, ConchBooks. 480 p.
24
Rodríguez, F.; Oliver, J.F.; Marín, A. and Medina, J.R. 1990. The general stochastic model of nucleotide substitution. J Theor Biol. Vol. 142, pp: 485-501.
25
Ronquist, F. and Huelsenbeck, J.P., 2003. MRBAYES3: Bayesian phylogenetic inference under mixed models. Bioinformatics. Vol. 19, pp: 1572-1574.
26
Sotelo, G.; Morán, P. and Posada, D., 2009. Molecular phylogeny and biogeographic history of the European Maja spider crabs (Decapoda, Majidae). Molecular Phylogenetics and Evolution. Doi:10.1016/j.ympev. 2009.05.009.
27
Strong, E.E. and Bouchet, P., 2013. Cryptic yet colorful: anatomy and relationships of a new genus of Cerithiidae (Caenogastropoda, Cerithioidea) from coral reef drop-offs. Invertebrate Biology. Vol. 132, No. 4, pp: 326-351.
28
Swofford, D.L., 2003. PAUP. Phylogenetic Analysis Using Parsimony (and Other Methods). Version 4. Sinauer Associates, Sunderland, Massachusetts.
29
Tamura, K.; Peterson, D.; Peterson, N.; Stecher, G.; Nei, M. and Kumar, S., 2011. MEGA5: molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Molecular Biology and Evolution. Vol. 28, pp: 2731-2739.
30
Thompson, J.D.; Higgins, D.G. and Gibson, T.J., 1994. CLUSTAL W: improving the sensitivity of progressive multiple sequence alignment through sequence weighting, position-specific gap penalties and weight matrix choice. Nucleic Acids Res. Vol. 22, pp: 4673-4680.
31
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین تفاوت در حساسیت گونههای مختلف کرمخاکی به سرب با استفاده از سطوح پیش پراکسیداسیون لیپیدی و آنتی اکسیدانی کل
کرمهای خاکی بهمنظور ارزیابی ریسک آلایندههای محیطی توسط محققین مختلف بهصورت گستردهای بهعنوان شاخص زیستی مورد استفاده قرار گرفتهاند. از سویی دیگر گونههای کرم خاکی موجود در یک منطقه و نیز حساسیت آنها به یک آلاینده خاص متفاوت میباشد. از اینرو هدف مطالعه حاضر بررسی اثرات فلز سرب بر ظاهر، توده زیستی، پراکسیداسیون لیپیدی و ظرفیت آنتی اکسیدانی کل به عنوان نشانگرهای زیستی در گونههای Aporrectodea rosea، Aporrectodea caliginosa، Dendrobaena hortensis و Eisenia fetida کرم خاکی به منظور تعیین گونه ذاتاً حساستر به سرب است. برای این منظور، تست سمیت روی کرمهای خاکی به روش تماسی مطابق دستورالعمل 207 سازمان همکاری و توسعه اقتصادی و اندازهگیری فعالیت آنتیاکسیدانهای کل و پراکسیداسیون لیپیدی با مالون دی آلدئید بهترتیب با روشهای توان آنتی اکسیدانی احیای آهن و تیوباربیوتوریک اسید انجام شدند. نتایج نشان داد کهترتیب شدت بروز علائم ظاهری و فیزیولوژیک مشاهده شده که از جمله آنها میتوان به کشیده شدن بدن، انقباض وزیکول سمینال، انقباض حلقهها، پارگی کوتیکول و کوتاه شدن بدن اشاره کرد، به صورت A. rosea>A. caliginosa>D. hortensis>E. fetida بود. هم چنین گونه A. rosea قرار گرفته در معرض تیمارهای مختلف سرب، نسبت به کاهش توده زیستی و سطوح پراکسیداسیون لیپیدی و آنتی اکسیدانی کل حساسیت بیش تری را نشان داد. بنابراین باتوجه به یافتههای بهدست آمده میتوان پیشنهاد نمود که گونه A. rosea کرم خاکی میتواند به عنوان شاخص زیستی مناسب در مقابل آلودگی خاک به سرب مدنظر قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_70779_b77b2847340fd688d3dd46c355d78133.pdf
2018-06-22
261
268
کرم خاکی
ظرفیت آنتی اکسیدان های کل
پراکسیداسیون لیپیدی
مالون دی آلدئید
سرب
محمدحسین
سینکاکریمی
mh_sinkakarimi@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، کدپستی: 95863-65719
AUTHOR
عیسی
سلگی
e.solgi@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه ملایر، ملایر، کدپستی: 95863-65719
LEAD_AUTHOR
اباصلت
حسین زاده
ahcolagar@umz.ac.ir
3
گروه زیست شناسی سلولی و مولکولی، دانشکده علوم پایه، دانشگاه مازندران، بابلسر، کدپستی: 95447-47416
AUTHOR
Barata, C.; Varo, I.; Navarro, J.C.; Arun, S. and Porte, C., 2005. Antioxidant enzyme activities and lipid peroxidation in the freshwater cladoceran Daphnia magna exposed to redox cycling compounds. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Toxicology & Pharmacology. Vol. 140, No. 2, pp: 175-186.
1
Bartsch, H. and Nair, J., 2000. Ultrasensitive and specific detection methods for exocylic DNA adducts: markers for lipid peroxidation and oxidative stress. Toxicology. Vol. 153, No. 1, pp: 105-114.
2
Benzie, I.F. and Strain, J.J., 1996. The ferric reducing ability of plasma (FRAP) as a measure of “antioxidant power”: the FRAP assay. Analytical biochemistry. Vol. 239, No. 1, pp: 70-76.
3
Bierkens, J.; Klein, G.; Corbisier, P.; Van Den Heuvel, R.; Verschaeve, L.; Weltens, R. and Schoeters, G., 1998. Comparative sensitivity of 20 bioassays for soil quality. Chemosphere. Vol. 37, No. 14, pp: 2935-2947.
4
Bouché, M.B., 1992. Earthworm species and ecotoxicological studies. In: Greig- Smith, P.W., Becker, H., Edwards, P.J., Heimbach, F. (Eds.), Ecotoxicology of Earthworms. Intercept Press, Andover. pp. 20-35.
5
Chen, C.; Zhou, Q.; Liu, S.and Xiu, Z., 2011. Acute toxicity, biochemical and gene expression responses of the earthworm Eisenia fetida exposed to polycyclic musks. Chemosphere. Vol. 83, No. 8, pp: 1147-1154.
6
Csuzdi, C. and Zicsi, A., 2003. Earthworms of Hungary: Annelida: Oligochaeta, Lumbricidae. Hungarian Natural History Museum. 272 p.
7
Domínguez-Crespo, M.A.; Sánchez-Hernández, Z.E.; Torres-Huerta, A.M.; Negrete, M.D.L.L.X.; Conde Barajas, E. and Flores-Vela, A., 2012. Effect of the heavy metals Cu, Ni, Cd and Zn on the growth and reproduction of epigeic earthworms (E. fetida) during the vermistabilization of municipal sewage sludge. Water, Air & Soil Pollution. Vol. 223, No. 2, pp: 915-931.
8
Edwards, C.A. and Coulson, J.M., 1992. Choice of earthworm species for laboratory tests. p 36-43. In: Greig-Smith PW, Becker H, Edwards PJ, Heimbach F (eds). Ecotoxicology of Earthworms. Intercept Ltd, Andover, UK.
9
Fitzgerald, D.G.; Warner, K.A.; Lanno, R.P. and Dixon, D.G., 1996. Assessing the effects of modifying factors on pentachlorophenol toxicity to earthworms: applications of body residues. Environmental toxicology and chemistry. Vol. 15, No.12, pp: 2299-2304.
10
Fourie, F.; Reinecke, S.A. and Reinecke, A.J., 2007. The determination of earthworm species sensitivity differences to cadmium genotoxicity using the comet assay. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 67, No. 3, pp: 361-368.
11
Gopal, V.; Clement, T. and Nagarajan, K., 1998. Potential of Megascolex pumilio in biomonitoring environmental pollution. Indian Journal of Environmental Health. Vol. 28, No. 3, pp: 194-199.
12
Gupta, S.K. and Sundararaman, V., 1990. Biological response of earthworm Pheretima posthuma to inorganic cadmium. Indian journal of experimental biology. New Delhi. Vol. 28, No. 1, pp: 71-73.
13
ISO, 17512-1. 2008. Soil Quality-Avoidance test for determining the quality of soils and effects of chemicals on behaviour-Part 1: Test with earthworms (Eisenia fetida and Eisenia andrei) Geneva, Switzerland: International Organiza tion for Standardization.
14
Kalaiselvan, K.; Prince, S.P.M. and Subburam, W.V., 1996. Toxicity of lead to the earthworm Drawida ramnadana (Michaelsen). Pollution Research. Vol. 15, pp:15-18.
15
Kula, H., 1995. Comparison of laboratory and field testing for the assessment of pesticide side effects on earthworms. Acta Zoologica Fennica. Vol. 196, pp: 338-341.
16
Lin, D.; Zhou, Q.; Xie, X. and Liu, Y., 2010. Potential biochemical and genetic toxicity of triclosan as an emerging pollutant on earthworms (Eisenia fetida). Chemosphere. Vol. 81, No. 10, pp:1328-1333.
17
Liu, J.; Xiong, K.; Ye, X.; Zhang, J.; Yang, Y. and Ji, L., 2015. Toxicity and bioaccumulation of bromadiolone to earthworm Eisenia fetida. Chemosphere. Vol. 135, pp: 250-256.
18
Lowe, C.N. and Butt, K.R., 2005. Culture techniques for soil dwelling earthworms: a review. Pedobiologia. Vol. 49, No. 5, pp: 401-413.
19
Miyazaki, A.; Amano, T.; Saito, H. and Nakano, Y., 2002.Acute toxicity of chlorophenols to earthworms using a simple paper contact method and comparison with toxicities to fresh water organisms. Chemosphere. Vol. 47, pp: 65-69.
20
Morgan, J.E.; Norey, C.G.; Morgan, A.J. and Kay, J., 1989. A comparison of the cadmium-binding proteins isolated from the posterior alimentary canal of the earthworms Dendrodrilus rubidus and Lumbricus rubellus. Comparative Biochemistry and Physiology Part C: Comparative Pharmacology. Vol. 92, No. 1, pp: 15-21.
21
Nordberg, J. and Arner, E.S., 2001. Reactive oxygen species, antioxidants, and the mammalian thioredoxin system. Free radical biology and medicine. Vol. 31, No. 11, pp: 1287-1312.
22
Nursita, A.I.; Singh, B. and Lees, E., 2005. The effects of cadmium, copper, lead, and zinc on the growth and reproduction of Proisotoma minuta Tullberg (Collembola). Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 60, No. 3,
23
pp: 306-314.
24
OECD. 1984. Earthworm, Acute Toxicity Tests. OECD Guidelines for the Testing of Chemicals. Vol. 1, pp: 1-9.
25
OECD. 2004. Earthworm Reproduction Test (Eisenia fetida/andrei). OECD Guideline for Testing Chemicals.
26
Vol. 1, pp: 1-18.
27
Ohkawa, H.; Ohishi, N. and Yagi, K., 1979. Assay for lipid peroxides in animal tissues by thiobarbituric acid reaction. Anal biochem. Vol. 95, No. 2, pp: 351-358.
28
Regoli, F.; Gorbi, S.; Fattorini, D.; Tedesco, S.; Notti, A.; Machella, N. and Piva, F., 2006. Use of the land snail Helix aspersa as sentinel organism for monitoring ecotoxicologic effects of urban pollution: an integrated approach. Environmental health perspectives. pp: 63-69.
29
Roberts, B.L. and Dorough, H.W., 1985. Hazards of chemicals to earthworms. Environmental Toxicology and Chemistry. Vol. 4, No. 3, pp: 307-323.
30
Roberts, B.L. and Wyman Dorough, H., 1984. Relative toxicities of chemicals to the earthworm Eisenia foetida. Environmental Toxicology and Chemistry. Vol. 3, No. 1, pp: 67-78.
31
Rozman, K.K. and Klaassen, C.D., 2001. Absorption, distribution and excretion of toxicants. In: Klaassen, K.D. (Ed.), Casarett and Doull’s Toxicology. The Basic Science of Poisons. McGraw-Hill, New York. pp: 107-132.
32
Shalata, A. and Tal, M., 1998. The effect of salt stress on lipid peroxidation and antioxidants in the leaf of the cultivated tomato and its wild salt‐tolerant relative Lycopersicon pennellii. Physiologia Plantarum. Vol. 104,
33
No. 2, pp: 169-174.
34
Sivakumar, S., 2015. Effects of metals on earthworm life cycles: a review. Environmental monitoring and assessment. Vol. 187, No. 8, pp:1-16.
35
Sivakumar, S. and Subbhuraam, C.V., 2005. Toxicity of chromium (III) and chromium (VI) to the earthworm Eisenia fetida. Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 62, No. 1, pp: 93-98.
36
Sivakumar, S.; Kavitha, K.; Rejeshwari, S.; Prabha, D. and Subburam, V., 2003. Effect of cadmium and mercury on the survival morphology and burrowing behaviour of the earthworm Lambito Mauritii (Kinberg). Indian Journal of Environmental Protection. Vol. 23, pp: 799-992.
37
Spurgeon, D.J. and Hopkin, S.P., 1996. Effects of variations of the organic matter content and pH of soils on the availability and toxicity of zinc to the earthworm Eisenia fetida. Pedobiologia. Vol. 40, No.1, pp: 80-96.
38
Stenersen, J., 1979. Action of pesticides on earthworms.1. Toxicity of cholinesterase- inhibiting insecticides to earthworms as evaluated by laboratory tests. Journal of Pesticide Science. Vol. 10, pp: 66-74.
39
Stohs, S.J. and Bagchi, D., 1995. Oxidative mechanisms in the toxicity of metal ions. Free radical biology and medicine. Vol. 18, No. 2, pp: 321-336.
40
Subramaniam, S.; Thangavel, P. and Subburam, V., 1991. Behavioral, morphological and toxic effects of Zn in the earthworm, Lambito mauritii (kinberg) in water and soil media. Indian Biologist. Vol. 24, pp: 1-7.
41
Sun, Y.; Yin, Y.; Zhang, J.; Yu, H. and Wang, X., 2007. Bioaccumulation and ROS generation in liver of freshwater fish, goldfish Carassius auratus under HC Orange No. 1 exposure. Environmental toxicology. Vol. 22, No. 3, pp: 256-263.
42
Veerabahu, S.; Prince, S.P.M.W. and Subburam,
43
V., 1995. Toxicity of cadmium to the earthworm Drawida ramnadana (Michaelsen). Journal of Environmental Pollution. Vol. 2, pp: 55-58.
44
Wang, Z.; Cui, Z.; Liu, L.; Ma, Q. and Xu, X., 2016. Toxicological and biochemical responses of the earthworm Eisenia fetida exposed to contaminated soil: Effects of arsenic species. Chemosphere. Vol. 154, pp: 161-170.
45
Xu, X.B.; Shi, Y.J.; Lu, Y.L.; Zheng, X.Q. and Ritchie, R.J., 2015. Growth inhibition and altered gene transcript levels in earthworms (Eisenia fetida) exposed to 2, 2′, 4, 4′-tetrabromodiphenyl ether. Archives of environmental contamination and toxicology. Vol. 69, No. 1, pp: 1-7.
46
Xue, Y.; Gu, X.; Wang, X.; Sun, C.; Xu, X.; Sun, J. and Zhang, B., 2009. The hydroxyl radical generation and oxidative stress for the earthworm Eisenia fetida exposed to tetrabromobisphenol A. Ecotoxicology. Vol. 18, No. 6,
47
pp: 693-699.
48
Yasmin, S. and D’Souza, D., 2007. Effect of pesticides on the reproductive output of Eisenia fetida. Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 79, No. 5, pp: 529-532.
49
Žaltauskaitė, J. and Sodienė, I., 2014. Effects of cadmium and lead on the life-cycle parameters of juvenile earthworm Eisenia fetida. Ecotoxicology and environmental safety.
50
Vol. 103, pp: 9-16.
51
Zelikoff, J.T.; Wang, W.; Islam, N. and Flescher, E., 1996. Assays of reactive oxygen intermediates and antioxidant enzymes in medaka (Oryzias latipes): potential biomarkers for predicting the effects of environmental pollution. Techniques in Aquatic Toxicology. CRC Press, Boca Raton, Florida. pp: 178-206.
52
Zhang, W.; Liu, K.; Li, J.; Chen, L. and Lin, K., 2015. Uptake and depuration kinetics of lead (Pb) and biomarker responses in the earthworm Eisenia fetida after simultaneous exposure to decabromodiphenyl ether (BDE209). Ecotoxicology and environmental safety. Vol. 113, pp: 45-51.
53
Zhang, W.; Song, Y.F.; Sun, T.H.; Song, X.Y.; Zhou, Q.X. and Zheng, S.L., 2007. Effects of phenanthrene and pyrene on cytochrome P450 and antioxidant enzymes of earthworms (Eisenia fetida). Environmental Chemistry. Vol. 26, pp: 202-207 (in Chinese).
54
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی و بررسی تراکم و پراکنش فیتوپلانکتونی سد مخزنی کارده در خراسان رضوی
به منظور شناسایی و بررسی تراکم و پراکنش فیتوپلانکتونی، نمونه برداری طی 6 مرحله از فروردین لغایت اسفندماه 1394 در دریاچه مخزنی سد کارده مشهد انجام پذیرفت. نمونهبرداری فیتوپلانکتونی به صورت افقی و عمودی از اعماق مختلف (لایه های 0 ، 5 ، 10 ، 20 متری) توسط برداشت آب با دستگاه روتنر و رساندن به حجم 10 لیتر، همگن کردن و در نهایت برداشت یک لیتر از آن صورت گرفت. نمونه ها با فرمالین به نسبت 4 درصد تثبیت و در آزمایشگاه با استفاده از محفظه های 5 میلی لیتر و میکروسکوپ معکوس مورد شناسایی و شمارش قرار گرفتند. در این بررسی در مجموع 35 جنس در 6 شاخه فیتوپلانکتونی شناسایی گردید. از بین جنس های شناسایی شده 8 جنس مربوط به شاخه جلبک های دیاتوم (acillariophyta)، یک جنس مربوط به شاخه اگلنافیتا (Euglenophyta)، سیزده جنس مربوط به شاخه جلبک های سبز (Chlorophyta)، سه جنس مربوط به شاخه پیروفیتا (Pyrrophyta)، دو جنس مربوط به شاخه کریزوفیتا (Chrysophyta) و 5 جنس مربوط به شاخه سیانوباکترها (Cyanophyta) تعلق داشتند. غالبیت فیتوپلانکتونی در این سد مخزنی با شاخه باسیلاریوفیتا که 73/8 درصد جمعیت سالانه را دارا بودند و نمونه های غالب آن جنس های Cyclotella، Navicula و Synedra می باشند. شاخه کریزوفیتا با فراوانی 12/2 درصد که جنس های غالب آن به ترتیب فراوانی Dinobryon و Synura و شاخه جلبک های سبز با فراوانی 8/2 درصد که جنس های غالب آن Scenedesmus، Cosmarium و Tetraedron به ترتیب رتبه های فراوانی را در طی سال 94 نشان دادند. میانگین بیش ترین تراکم سلول های فیتوپلانکتونی در تمامی ماه های نمونه برداری به شاخه جلبک های دیاتوم بود. میانگین فراوانی سالانه کل شاخه های فیتوپلانکتونی 11456±69500449 عدد در لیتر بوده که در فصل بهار با فراوانی 467892±25044064 عدد در لیتر بالاترین تراکم را نشان داد. فراوانی شاخه های فیتوپلانکتونی در فصول تابستان، پائیز و زمستان به ترتیب با تراکم فراوانی 17323830، 10786088 و 16346467 عدد در لیتر برآورد گردید. حداکثر فراوانی فیتوپلانکتونی در ایستگاه های یک (تاج سد) با فراوانی 7589932، ایستگاه سه (انتهای دریاچه) با فراوانی 6637800 و ایستگاه دو (بخش میانی دریاچه) با فراوانی 5495732 عدد در لیتر مشاهده شد. با توجه به شاخص های تروفی و با توجه به میزان حد شفافیت، مقادیر فسفات، نیتروژن و کلروفیل a حاصله از داده های فیزیکی و شیمیایی، سد مخزنی کارده در حد دریاچه های مزوتروف کم قرار می گیرد. طبق آزمون های غیرپارامتریک کروسکال – والیس و من – ویتنی بین فراوانی فیتوپلانکتونی در ایستگاه ها و ماه های مختلف اختلاف معنی دار آماری وجود داشت (0/05>p). در بررسی فصول نیز فصل بهار با سه فصل دیگر این اختلاف معنی دار را نشان داد (0/05>p).
http://www.aejournal.ir/article_73334_10df487e065a49f868f5bd395df4afd5.pdf
2018-06-22
269
276
فیتوپلانکتون
تراکم
پراکنش
سد مخزنی کارده
خراسان رضوی
محمد
صلواتیان
salavatian_2002@yahoo.com
1
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
LEAD_AUTHOR
اکبر
پورغلامی مقدم
pourgholami_yas@yahoo.com
2
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
مرضیه
مکارمی
marziyeh.makaremi@yahoo.com
3
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
سپیده
خطیب حقیقی
sepidehkhatib@yahoo.com
4
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی کشور، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندرانزلی، ایران
AUTHOR
بانی، ع .، 1375. بررسی ترکیب فیتوپلانکتونی حاصل از انواع کودها در استخرهای پرورش ماهیان گرم آبی. پایان نامه کارشناسی ارشد. صفحات 85 تا 87.
1
چوداررضایی، س.؛ محسن پور، ع.؛ محبی، ف. و شیری، ص.، 1387. شناسایی و بررسی فراوانی زئوپلانکتون های دریاچه پشت سد ارس. مجموعه مقالات نخستین همایش ملی منابع شیلاتی دریای خزر. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان.
2
خداپرست، س.ح.، 1378. گزارش نهایی پروژه هیدرولوژی و هیدروبیولوژی تالاب انزلی طی سالهای 1371 تا 1375. مرکز تحقیقات شیلاتی استان گیلان. 156 صفحه.
3
دره شوری، ف.، ۱۳۷۷. مطالعه اکولوژیک و فلور جلبکی دریاچه سد طرق. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده علوم، دانشگاه فردوسی مشهد. ۱۴۹ صفحه.
4
شمس،م.وافشارزاده،س.،1387. مطالعه تغییرات فیتوپلانکتون های دریاچه زاینده رود. مجله زیست شناسی ایران. جلد 21، شماره ۵، صفحات 784 تا 794.
5
صلواتیان، س.م.؛ عبدالله پوربی ریا ، ح.؛ نظامی بلوچی، ش.ع.؛ مکارمی، م. و پورغلامی مقدم، ا.،1389. ترکیب گونه ای و تعیین تراکم فیتوپلانکتونی در دریاچه پشت سد لار. مجله تالاب. سال 2، شماره 3، صفحات 26 تا 38.
6
صلواتیان، س.م.؛ سبک آرا، ج.؛ آذری تاکامی، ق.؛ رجبی نژاد، ر.؛ علمی، ا.م. و علی اف، ع.ر.، 1390. شناسایی و بررسی تراکم و پراکنش زئوپلانکتونی در دریاچه سدلار استان تهران. مجله شیلات دانشگاه آزاد اسلامی واحد آزادشهر. سال 5، شماره 4، صفحات 1 تا 16.
7
صلواتیان، س.م.؛ عابدینی، ع. و میرزاخانی، ع.ر.، 1396. شناسایی و تعیین زی توده درشت بی مهرگان کفزی جهت آبزی پروری در دریاچه مخزنی سد ارسباران. نشریه توسعه آبزی پروری. جلد 11، شماره 3، صفحات ۱ تا 11.
8
علیزاده، ژ.؛ محسن پورآذری، ع.؛ صیدگر، م. و علیزاده، م.، 1387. بررسی تغییرات نیترات و فسفات دریاچه ارس. مجموعه مقالات همایش آبزیپروری نوین و توسعه پایدار دانشگاه آزاد اسلامی واحد بابل. صفحات 858 تا 867.
9
غلامی، ع.؛ اجتهادی، ح. و قاسم زاده، ف.، 1384. بررسی تنوع گونه ای و اکولوژیک فیتوپلانکتون های دریاچه بزنگان. مجله علمی شیلات ایران. سال 4، شماره 2، صفحات 73 تا 90.
10
فلاحی،م.،1378. بررسی پلانکتون های بخش جنوبی دریای مازندران. مجله علمی شیلات ایران. سال 1، شماره 4، صفحات 19 تا 38.
11
محبی،ف.؛ محسن پورآذری،ع. و عاصم، ع.، 1391. بررسی جمعیت فیتوپلانکتونی و شاخص های جمعیتی در دریاچه سد ارس. مجله زیست شناسی ایران. جلد 25. شماره 2، صفحات 316 تا 328.
12
مکارمی، م.؛ سبک آرا، ج. و کفاش محمدجانی، ط.، 1385. شناسایی و پراکنش فیتوپلانکتونی در مناطق مختلف تالاب انزلی و نواحی ساحلی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. سال 15، شماره 1، صفحات 129تا 149.
13
مهندسین مشاور یکم. 1367. مطالعات گام اول طرح جامع احیاء تالاب انزلی. جلد 7. لیمنولوژی جهاد سازندگی، کمیته امور آب.
14
Balayut, E.A., 1983. Stocking and introduction of fish in lakes and reservoirs in the ASEAN countries. FAO technical paper No. 236. FAO, Rome. 82 p.
15
Case, M.; Leca, E.E.; Leitao, S.N.; Sant Anna, E.E.; Schwanborn, R. and Moraes Junior, A.T., 2008. Plankton Community as indicator of water quality in tropical shrimp culture ponds. Marine pollution Bulletin.
16
Edmonson, W.T., 1959. Fresh water biology. New York, London.John Wiley and Sons Inc. 1248 p.
17
Kadri, A., 1998. Diatoms (Bacillariophyta) in the Phytoplankton of Keban Reservoir and their seasonal variations.Tr. J. Bot. Turkey. Vol. 22, pp: 25-33.
18
Lei, A.P.; HU, Z.L.; Wang, J.; SHI, Z.X. and TAM, F.Y., 2005. Structure of the phytoplankton community and its relationship to water quality in Donghu lake. Wuhan, China, J. Plant Biology. Vol. 47, No. 1, pp: 27-37.
19
Lehman, J.T.; Abella, S.E.B.; Litt, A.H. and Edmondson, W.T., 2004. Fingerprints of biocomplexity: Taxon Specific growth of Phytoplankton in relation to environmental factors. Limnology and Oceanography. USA. Vol. 49, No. 4, pp:1446-1456.
20
Newell, G.E. and Newell, K.C., 1977. Marin plankton, Hutchinson and Co., London. U.K. 242 p.
21
OECD. 1982. Eutrophication of Waters. Monitoring, Assessment and Control, OECD, Paris.Organisation for Economic Cooperation and Development.154 p.
22
Newton, A.; Icely, J.D.; Falcao, M.; Nobre, A.; Nunes, J.P.; Ferreira, J.G. and Vale, C., 2003. Evaluation of eutrophication in the Ria Formosa coastal lagoon. Portugal.Continental shelf Research. Vol. 23, pp: 1945-1961.
23
Pontin, R.M., 1978. A key to the fresh water planktonic and semiplanktonic rotifera of the British Isles.Titus Wilson and Son.Ltd. 178 p.
24
Ruttner-Kolisko, A., 1974. Plankton rotifers, biology and taxonomy, Austrian Academy of Science. 147 p.
25
Smith, V.A., 2003. Eutrophication of fresh water and coastal marine ecosystems: a global problem. Envirom. Sci. Pollut. Res. Int. Vol. 10, pp: 126-139.
26
Standard Method for examination of water and wastewater. 1989. American Public Health Association. U.S.A. 1194 p.
27
ORIGINAL_ARTICLE
نظارت بر سلامت رودخانه زرین گل با استفاده از شاخص زیستی SIGNAL
تخریب و تنزل زیستگاه رودخانه ها موجب از دست دادن تنوع زیستی و هم چنین در ارتباط با سلامت بوم سازگان وکیفیت آب می باشد. یکی از روش های مناسب جهت تعیین سلامت و تاثیر فعالیتهای انسانی بر کاهش کیفیت رودخانهها، ارزیابی آن ها با استفاده از جمعیت درشت بیمهرگان کفزی می باشد. هدف از این مطالعه ارزیابی سلامت رودخانه زرین گل با استفاده از شاخص SIGNAL می باشد.نمونههای کفزی با استفاده از سوربرسمپلر با سطح پوشش 900 سانتی متر مربع در فصول زمستان و بهار از 4 ایستگاه (بالادست رودخانه، در موقعیتهای خروجی مزارع پرورش ماهی و منطقه جنگلی) با سه تکرار گرفته شد. در مجموع تعداد 1971 نمونه از درشت بیمهرگان کفزی شناسایی شدند که شامل 19 خانواده و 8 راسته بودند. نتایج نشان داد که امتیاز شاخص SIGNAL در بین ایستگاه های نمونه برداری مشابه و در یک چهارم a با کیفیت مناسب قرار گرفته اند. اما امتیاز شاخص SIGNAL 2 در ایستگاه 4 در یک چهارم b با آلودگی نسبی به دست آمد. براساس نتایج به دست آمده از پراکنش بزرگ بیمهرگان کفزی و شاخص زیستی، تاثیر عوامل انسانی بر روی نهر زرین گل کاملا مشهود بوده و از ایستگاههای دست نخورده (1 و 3) به طرف ایستگاههای (2 و 4) که تحت تاثیر انواع پساب مزارع پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان قرار داشتند شرایط نامطلوب تری را از نظر آلودگی دارا بودند.
http://www.aejournal.ir/article_73591_d7703e9afba9a0be18fed7bd6de6f33c.pdf
2018-06-22
277
282
جوامع بزرگ بی مهرگان آبزی
شاخص SIGNAL
رودخانه زرین گل
محمد
قلی زاده
gholizade_mohammad@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، صندوق پستی: 163
LEAD_AUTHOR
محمد هادی
پاکروان
gh.model09@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، صندوق پستی: 163
AUTHOR
احمدی، م.ر. و نفیسی، م.، 1380. شناسایی موجودات شاخص بیمهره آبهای جاری. انتشارات خبیر، 240 صفحه.
1
افشین، ی.، 1363. رودخانه های ایران. انتشارات وزارت نیرو. 575. صفحه
2
شمالی، م. و عبدالملکی، ش.، 1375. بررسی های زیستی و غیرزیستی رودخانه کرگان رود، مرکز تحقیقات. شیلات گیلان، بندر انزلی. 60 صفحه.
3
جمالزاده، ف. و افراز، ع.، 1386 . گزارش بررسی زیستی و غیر زیستی رودخانه شفارود. مرکز تحقیقات شیلات گیلان، بندر انزلی. 65 صفحه.
4
قانع ساسان سرایی،ا.،1383. شناسایی ساختار جمعیت ماکروبنتوزهای رودخانه چافرود در استان گیلان با توجه به برخی عوامل کیفی آب (در محدوده روستای اورمان ملال). پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه تربیت مدرس. 98 صفحه.
5
محبوبی صوفیانی،ن.ونادری،غ.،1379. کلید شناسایی بی مهرگان نهرها و رودخانهها. انتشارات جهاد دانشگاهی دانشگاه صنعتی اصفهان. 131 صفحه.
6
وزارت نیرو. 1370. مطالعات مرحله اول طرح تغذیه مصنوعی محدود رودخانه گرمابدشت زرین گل (جلد 2) مطالعات هیدرولوژی. 68 صفحه.
7
Blanchet, H.; Lavesque, N.; Ruellet, T.; Dauvin, J.C.; Sauriau, P.G.; Desroy, N. and De Montaudouin, X., 2008. Use of biotic indices in semi-enclosed coastal ecosystems and transitional waters habitats implications for the implementation of the European Water Framework Directive. Ecological Indicators. Vol. 8, No. 4, pp: 360-372.
8
Bode, R.W.; Novakk, M.A.; Abele, L.E.; Heitzman, D.L. and Smith, A.J., 2002. Quality assurance work plan for Biological stream monitoring in New York State. Stream Biomonitoring unit, New York State, Department of Environmental conservation. Albany. 122 p.
9
Camargo, J.A.; Gonzalo, C. and Alonso, A., 2011. Assessing trout farm pollution by biological metrics and indices based on aquatic macrophytes and benthic macro invertebrates: a case study. Ecology Indicators. Vol. 11, pp: 911-917.
10
Cooper, C.M., 1987. Benthos in Bear Creek, Mississippi: Effects of habitat variation and agricultural sediments. Journal of Freshwater Ecology. Vol. 4, pp: 101-113.
11
Hynes, H.B.N., 1970. The ecology of running water. University of Toronto Press, Canada. 555 p.
12
Schultz, R. and Dibble, E., 2012. Effects of invasive macrophytes on freshwater fish and macroinvertebrate communities: the role of invasive plant traits. Hydrobiologia. Vol. 684, No. 1, pp: 1-14.
13
Sioli, H., 1975. Tropical rivers as expressions of their terrestrial environments. In: Golley, F.B., Medina, E. (Eds.). Tropical Ecological Systems. Springer Berlin Heidelberg. pp: 275-288.
14
Yokoyama, H.; Nishimura, A. and Inoue, M., 2007. Macro benthos as biological indicators to assess the influence of aquaculture on Japanese coastal environment. In: Ecological and Genetic Implication of Aquaculture Activities. Springer Publications, New York City, New York, USA. pp: 407-423.
15
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی و تنوع زیستی گونه ای کفزیان رودخانه قره سو- جنوب شرق دریای خزر
این مطالعه به منظور شناسایی گونه های مختلف کفزیان و ارزیابی تنوع فصلی در سال 1389 در طی 4 فصل در دو ایستگاه رودخانه ای و مصبی رود قره سو انجام گردید. برای نمونه برداری از دستگاه گراب ون وین به صورت 3 تکرار استفاده گردید و نمونه های جمع آوری شده جهت شناسایی در فرمالین 4% تثبیت گردیدند. در ایستگاه رودخانه 9 راسته متعلق به 12 خانواده شناسایی شد که بیش ترین فراوانی مربوط به خانواده Lumbriculidae با فراوانی 19/39% می باشد و کم ترین فراوانی متعلق به خانواده Tubificidae با فراوانی 2/07% بود. در ایستگاه مصب 10 راسته و 12 خانواده شناسایی گردید که بیش ترین فراوانی مربوط به خانواده هایAmpharetidae (21%) Lumbriculidae(11/55%)، Naididae (11/32% و( Gammaridae(9/98% بود. بیش ترین تراکم کفزیان در ایستگاه رودخانه در فصل پاییز و کم ترین تراکم در فصل زمستان بود. بیش ترین و کم ترین تراکم کفزیان در ایستگاه مصب به ترتیب در فصل بهار و فصل زمستان مشاهده شد. بیش ترین مقدارشاخص شانون در ایستگاه رودخانه در فصل بهار (2/36) و در ایستگاه مصب در فصل تابستان (2/31) مشاهده گردید. بیش ترین میزان شاخص سیمپسون در ایستگاه رودخانه در فصل تابستان (0/19) و در مصب حداکثر مقدار آن در فصل بهار بود. نتایج شاخص غنا نشان داد که بیش ترین مقدار این شاخص در رودخانه در فصل بهار و تابستان بود درحالی که در مصب قره سو بیش ترین مقدار آن در فصل پاییز بود. به طورکلی ایستگاه رودخانه تراکم و تنوع بالاتری نسبت به ایستگاه مصب دارد و از وضعیت اکولوژیکی بهتری برخوردار است.
http://www.aejournal.ir/article_73702_0a072e68f7bc216279de758dcf190c7a.pdf
2018-06-22
283
290
کفزیان
تنوع
پراکنش
تراکم
مصب رودخانه قره سو
طاهر
پورصوفی
puorsuofi@yahoo.com
1
مرکز تحقیقات ذخایر آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، گرگان، ایران
AUTHOR
آلتین
قجقی
altin.ghojoghi@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی ومنابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
LEAD_AUTHOR
رحمان
پاتیمار
rpatimar@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی ومنابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران
AUTHOR
احمدی، م. و نفیسی، م.، 1380. شناسائی موجودات شاخص بی مهره آب های جاری انتشارات خیبر. 240 صفحه.
1
آقاجری، ش.؛ اجلالی خانقاه، ک.؛ گرامی، م.ح.؛ ابراهیمی، م.؛ اکبرزاده،غ. و جوکار، ک.، 1394.بررسی تنوع و تراکم ماکروبنتوزها پس از شکوفایی جلبکی گونه Cochlodinium polykrikoides در سواحل استان هرمزگان. مجله تازه های بیوتکنولوژی سلولی مولکولی. دوره 6، شماره 21، صفحات 85 تا 92.
2
باقری توانی، م. و جمال زاده، ح.ر.،1393.بررسی شاخص های بوم شناختی و زیستی ماکروبنتوزهای ناحیه مصبی رودخانه شیرود منتهی به دریای خزر. مجله زیست شناسی دریا. سال 6، شماره 23، صفحات 81 تا 96.
3
جرجانی،س.؛قلیچی،ا. واکرمی،ر.، 1387. ارزیابی شاخص زیستی آلودگی و فون کفزیان نهر مادرسو پارک ملی گلستان. مجله شیلات ایران. سال 2، شماره 1، صفحات 41 تا 52.
4
جلیلی، م.؛ نگارستان، ح. و صفاییان، ش.، 1389. بررسی فون ماکروبنتیک بخش جنوب غربی تالاب انزلی و ارتباط آن ها با موادآلی بستر. مجله اقیانوس شناسی. سال 1، شماره4، صفحات 11 تا 19.
5
رشیدی، ش.؛ محمدی زاده، ف. و جلالی، ک.، 1395. ارزیابی کیفیت رسوبات سواحل بندرعباس با استفاده از برخی شاخص های اکولوژیک. زیست شناسی دریا. سال 8، شماره 29 ، صفحات 39تا50.
6
رضایی، ک.؛ کیانی، س.؛ مقدم، م.؛ پهلوانی، س. و سعیدپور، ب.، 1393. بررسی ساختار جوامع بنتیک رودخانه جاجرود بر پایه شاخص های زیستی (منطقه خجیر). مجله علوم و مهندسی محیط زیست. سال 2، شماره 5، صفحات 77 تا 84.
7
رهبری، ک.، 1384. مطالعه تاثیر برخی از پارامترهای زیست محیطی بر روی اجتماعات ماکروبنتیک در رودخانه کارون از ملاثانی تا دارخوین. پایان نامه کارشناسی ارشد محیط زیست، واحد علوم و تحقیقات اهواز.
8
سقلی، م.؛ باقراف، ر.؛ پاتیمار،ر.؛ حسینی، س.ع. و مختومی، ن.م.، 1391. پراکنش، فراوانی و توده زنده ماکروبنتوزهای خلیج گرگان و جنوب شرق دریای مازندران، استان گلستان. مجله پژوهش های علوم و فنون دریایی. دوره 7، شماره 4، صفحات46 تا 59.
9
شربتی، ص.؛ اکرمی، ر.؛ یلقی، ص.؛ میردار، ج. و احمدی، ز.، 1391. شناسایی، تعیین فراوانی و زی توده جوامع ماکروبنتیک در آب های ساحلی جنوب شرق دریای خزر (استان گلستان). مجله علمی شیلات ایران. سال 21، شماره 4، صفحات 23 تا 32.
10
شکری، م.؛ احمدی، م.ر؛ رحمانی، ح. و کامرانی، ا.، 1393. بررسی کیفیت رودخانه تجن ساری با استفاده از ترکیب جمعیت بی مهرگان کفزی و شاخص BMWP . محیط زیست جانوری، سال 6، شماره 4، صفحات 221 تا 230.
11
طاولی، م.؛ اسلامی، م. و مهدوی، س.م.، 1389. الگوی پراکنش و فراوانی مکانی و زمانی ماکروبنتوزهای سواحل جنوبی دریای خزر (ساحل شهرستان چالوس). مجله علمی شیلات ایران. سال 19، شماره 4، صفحات 147 تا 152.
12
طباطبایی،ط.؛امیری،ف. وپذیرا،ع.، 1388. پایش ساختار و تنوع اجتماعات ماکروبنتیک به عنوان شاخص های آلایندگی در خورهای موسی و غنام. مجله علمی شیلات ایران. شماره 4، صفحات 39 تا 41.
13
عباسپور، ر.؛ علیزاده ثابت، ح.؛ هدایتی فرد، م و مسگران کریمی، ج.، 1390. ارزیابی زیستی رودخانه چشمه کیله تنکابن (استان مازندران) با استفاده از شاخص های زیستی، ساختار جمعیتی و زی تودهای درشت بی مهرگان کفزی. مجله آبزیان و شیلات. سال 2، شماره 8، صفحات 63 تا 75.
14
کنت،م. و کاکر،پ.، 1380. توصیف و تحلیل پوشش گیاهی، ترجمه مصداقی، م.، جهاددانشگاهی دانشگاه فردوسی مشهد. 287 صفحه.
15
لالویی،ف.؛زلفی نژاد،ک.؛هاشمیان،ع.؛سالاروند،غ.؛قانع،ا. وطالبی،د.،1383. هیدرولوژی و هیدرو بیولوژی و آلودگی های زیست محیطی اعماق کم تر از 10 متر حوضه جنوبی دریایی خزر. پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، ساری. 394 صفحه.
16
مائی سیو،پ. وفیلاتووا،ز.،1985. جانوران و تولیدات زیستی دریای خزر. ترجمه شریعتی، ا.، 1373. مؤسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران. صفحات 39 تا 47.
17
محمودی فرد، ع.؛ ایمانپورنمین، ج.؛ علاف نویریان، ح. و غلامی دشتکی، ک.، 1395. کاربرد شاخص های زیستی جمعیتی در ارزیابی اکولوژیکی رودخانه شاهرود با استفاده از جمعیت بزرگ بی مهرگان. محیط زیست جانوری. سال 8، شماره 3، صفحات 145 تا 158.
18
نوروزی، م. و هاشمی، م.، 1395. ارزیابی زیستی فون کفزیان رودخانه نور رود در منطقه بلده نور. زیست جانوری. سال 8، شماره 3، صفحات 175 تا 182.
19
Barnes, B.V., 1998. Forest ecology. John Wiley and Sons. INC. 773 p.
20
Dobson, M., 1998. Ecology of Aquatic Systems. Longman. 222 P.
21
Gray, J.S., 1981. The ecology of marine sediment. Cambridge University Press. 475 P.
22
Owen, T.L., 1974. Handbook of common methods in limnology. Institute of Environmental studies and department of biology, Baylor University, Texas, U.S.A. pp: 120-130.
23
Roni, P.M. and Lierman, A., 2005. Monitoring and evaluating responces of solminid and other fishes to in stream restoration. University of Washington Press. pp: 318-339.
24
Rosenberg, D.M. and Resh, V.H., 1993. Freshwater Biomonitoring and Benthic Macroinvertebrates. Chapman and Hall. New York. 448 p.
25
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات عوامل محیطی بر الگوی تنوع و فراوانی ماکروبنتوزهای همراه با راسته زوآنتاریا (Zoantharia) در ناحیه بین جزرومدی جزیره هرمز
صخرههای مرجانی جزرومدی تحت تأثیر ترکیبی از عوامل محیطی و اجزاء زیستی قرار دارند که اثر مستقیمی بر جوامع همراه با آن ها دارد. بنابراین در این مطالعه اثرات برخی عوامل محیطی از قبیل عوامل آب دریا و ترکیب بستر بر الگوی پراکنش ماکروبنتوزهای همراه با راسته زوآنتاریا (Zoantharia) در منطقه بین جزر و مدی جزیره هرمز با استفاده از متغیرهای شاخصهای تنوع و مجموعه دادههای فراوانی به دست آمده در طی یک دوره 12 ماهه بین تیر 1394 و تیر 1395 بررسی شد. بدین منظور برای ارزیابی فراوانی پولیپ زوآنتیدها و ماکروبنتوزهای همراه در طول 6 ترانسکت با 3 نوع بستر سخت از روش ترانسکت منقطع خطی استفاده شد. نتایج حاصل از این مطالعه اختلاف معنیداری را در یکنواختی گونهای و غنای گونهای بین ترانسکتهای 3 و 6 با سایر ترانسکتها نشان داد. شاخصهای تنوع ماکروبنتوزی آزمون شده با شاخص شباهت بری- کورتیس، احتمالاً به عنوان نتیجهای از ترکیبهای مختلف بستر در زیستگاههای نامتجانس، در همه ترانسکتها به استثنای ترانسکتهای 3 و 6 به طور معنیداری یکنواخت بود. نتایج تجزیه و تحلیل پیرسون رابطه مثبت معنیداری میان فراوانی ماکروبنتوزها و اکسیژن محلول در همه ترانسکتها نشان داد، به طوری که تجزیه و تحلیل رگرسیون خطی چندگانه این رابطه معنیدار را در ناحیه فراساحلی ترانسکتها نشان داد. در نتیجه ترکیب بستر عامل اصلی محدود کردن پراکنش مکانی ماکروبنتوزهای همراه با زوآنتیدها بود، اگرچه اکسیژن محلول نیز مهم بود. هم چنین دادههای فراوانی، دو جامعه کفزی متمایز را نشان داد و این فرضیه را که الگوی پراکنش جوامع در طول منطقه ساحلی در یک شیب از قسمت بالا به پایینتر ناحیه جزر و مدی تغییر میکند را حمایت کرد.
http://www.aejournal.ir/article_73710_2fda0b03950321da2a198203ec3ebd89.pdf
2018-10-13
291
302
اکسیژن محلول
الگوی پراکنش
ترکیب بستر
زوآنتیدها
شاخص های تنوع
کفزیان
دارا
میرزاباقری
d.mirzabagheri.phd@hormozgan.ac.ir
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، صندوق پستی: 3995
AUTHOR
نرگس
امراللهی بیوکی
amrollahi@hormozgan.ac.ir
2
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، صندوق پستی: 3995
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
طاهری زاده
taherizadeh@hormozgan.ac.ir
3
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، صندوق پستی: 3995
AUTHOR
آقاجاری، ش.؛ اجلالیخانقاه، ک.؛ گرامی، م.ح.؛ ابراهیمی، م.؛ اکبرزاده، غ. و جوکار، ک.، 1394. بررسی تنوع و تراکم ماکروبنتوزها پس از شکوفایی جلبک گونه Cochlodinium polykrikoides در سواحل استان هرمزگان. سال 6، شماره 21، صفحات 85 تا 92.
1
اصغری، ث.؛ احمدی، م.ر.؛ محمدیزاده، ف. و اجلالی، ک.، 1394. بررسی اثرات براخی عوامل محیطی روی تنوع و تراکم دوکفهایهای سواحل ایرانی دریای عمان. مجله پژوهش های جانوری. سال 28، شماره 3، صفحات 263 تا 273.
2
امینی یکتا، ف.؛ آگاه، ه.؛ آقاجانپور، ف.؛ صالح، ا.؛ جلیلی، م.؛ حکمت آرا، م.؛ صادقی، پ.؛ واجدسمیعی، ج. و حمزه، م.ع.، 1393. پراکنش ردههای بیمهرگان کفزی در منطقه زیر جزرومدی خلیج چابهار و آبهای اطراف با تأکید بر تأثیر عوامل محیطی. نشریه اقیانوس شناسی. سال 5، شماره 18، صفحات 29 تا 37.
3
پوریوسف، ی.، 1391. پراکنش و فراوانی زوآنتیدها و مرجانهای سخت در منطقه جزرومدی جزیره هرمز. پایاننامه کارشناسی ارشد. دانشگاه تربیت مدرس. 76 صفحه.
4
جلیلی، م. و رضایی مارنانی، ح.، 1391. بررسی ساختار جوامع ماکروبنتوزهای منطقه ساحلی آبهای جزیره کیش. نشریه اقیانوس شناسی. سال 3، شماره 12، صفحات 1 تا 9.
5
دهقانی،ح.،1388.شناسایی و تخمین فراوانی راستههایZoantharia و Scleractinia در منطقۀ بین جزرومدی جزیرۀ هنگام. پایاننامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال. 130 صفحه.
6
سلیمانی راد، آ.؛ کشاورز، م.؛ بهره مند، م.؛ کامرانی، ا. و وزیری زاده، ا.، 1392. بررسی تأثیر مانسون تابستانه بر ساختار جوامع ماکروبنتوزی خور جاسک (دریای عمان). مجله بوم شناسی آبزیان. سال 3، شماره 1، صفحات 39 تا 50.
7
طباطبایی، ط.؛ امیری، ف. و پذیرا، ع.ا.، 1388. پایش ساختار و تنوع اجتماعات ماکروبنتیک بهعنوان شاخصهای آلایندگی در خورهای موسی و غنام. مجله علمی شیلات ایران. سال 3، شماره 4، صفحات 29 تا 40.
8
فارسی، ا.؛ سیف آبادی، ج. و عوفی، ف.، 1393. پراکنش مکانی جوامع ماکروبنتیک در ارتباط با شرایط محیطی سواحل بین جزر و مدی و زیر جزرومدی بوشهر. مجله علمی شیلات ایران. سال 67، شماره 1، صفحات 75 تا 86.
9
میرزاباقری، د. و میرزاباقری، د.، 1386. ماکروبنتوزهای سواحل صخرهای جزیره هرمز. انتشارات تندیس. تهران. 106 صفحه.
10
میرزاباقری، د.، 1385. بررسی ساختار جوامع ماکروبنتوزهای سواحل صخرهای جزیره هرمز. پایاننامه کارشناسی ارشد. دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر. 205 صفحه.
11
میرزاباقری، د.؛ نبوی، س.م.ب.؛ مهوری، ع. و کرمی، ک.، 1387. بررسی الگوهای پراکنش ماکروبنتوزهای سواحل صخرهای جزیره هرمز. مجله پژوهش و سازندگی. سال 10، شماره 1، صفحات 227 تا 243.
12
نوری کوپایی،آ.؛ قوام مصطفوی، پ.؛ فلاح مهرآبادی، ج. و فاطمی، س.م.ر.، 1394. بررسی تنوع زیستی راستۀ زوآنتاریا در خلیج فارس: جزیره هرمز. مجله علوم و فنون دریایی. سال 14، شماره 1، صفحات 33 تا 44.
13
Coles, S.L. and Fadlallah, Y.H., 1991. Reef coral survival and mortality at low temperatures in the Arabian Gulf: new species specific lower temperature limits. Coral Reefs. Vol. 9, pp: 231-237.
14
Dayton, P.K., 1971.Competition disturbance and community organization. The provision and subsequent utilization of space in a rocky intertidal community. Ecological Monographs. Vol. 41, pp: 351-389.
15
Desroy, N.; Warembourg, C.; Dewarumez, J.M. and Dauvin, J.C., 2002. Macrobenthic resources of the shallow soft-bottom sediments in the eastern English Channel and southern North Sea. ICES Journal of Marine Science. Vol. 60, pp: 120-131.
16
Gray, J.S., 2002. The ecology of marine sediments. 1st Ed. Cambridge University Press. London, UK. pp: 100-120.
17
Gray, J.S.; Wu, R.S. and Or, Y.Y., 2002. Effects of hypoxia and organic enrichment on the coastal marine environment. Marine Ecology Progress Series. Vol. 238, pp: 149-179.
18
Hammer, Ø.; Harper, D.A.T. and Ryan, P.D., 2001. PAST: Paleontological statistics software package for education and data analysis. Palaeontologia Electronica. Vol. 4, No. 1, pp: 1-9.
19
Heilskov, A.C. and Holmer, M., 2003. Effects of benthic fauna on organic matter mineralization in fish-farm sediments: importance of size and abundance. ICES Journal of Marine Science. Vol. 58, pp: 427-434.
20
Jayaraj, K.A.; Jayalakshmi, K.V. and Saraladevi, K., 2007. Influence of environmental properties on macrobenthos in the Northwest Indian Shelf. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 127, pp: 459-475.
21
Kavousi, J.; Seyfabadi, J.; Rezai, H. and Fnnner, D., 2011. Coral reefs and communities of Qeshm Island, the Persian Gulf. Zoological Studies. Vol. 50, pp: 276-283.
22
Meadows, P.S. and Campell, J.I., 1986. An introduction to marine science. John Wiley & Sons publishing company. New York, USA. 285 p.
23
Mirzabagheri, D.; Amrollahi Biuki, N. and Taheri Zadeh, M.R., 2017. A novel theoretical model of ecotoxicity status in macrobenthos associated with zoanthids using ecotoxicity tolerance index. In: Proceedings of Scinzer Scientific Publications. Austria. pp: 55-61.
24
Mostafavi, P.G.; Fatemi, M.R.; Shahhoseiny, M.H.; HoeghGuldberg, O. and Loh, W.K.W., 2007. Predominamce of clade D Symbiodinium shallow water reef- building corals off Kish and Larak Islands (Persian Gulf, Iran). Marine Biology. Vol. 153, pp: 25-34.
25
Namin, K.S. and Van Ofwegen, L., 2009. Some shallow water octocorals (Coelenterata: Anthozoa) of the Persian Gulf. Zootaxa. Vol. 2058, pp: 1-52.
26
Noori Koupaei, A.; Ghavam Mostafavi, P.; Fallah Mehrabadi, J. and Fatemi, S.M.R., 2014. Molecular diversity of coral reef-associated zoanthids off Qeshm Island, northern Persian Gulf. International Aquatic Research. Vol. 6, pp: 1-10.
27
Noori Koupaei, A.; Ghavam Mostafavi, P.; Fallah Mehrabadi,J.;Fatemi,S.M.R.and Dehghani, H., 2015. Diversity of shallow water zoantharians in Hengam and Larak Islands, in the Persian Gulf. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. Vol. 96, No. 5, pp: 1-11.
28
Nybakken, J.W., 1993. Marine biology an ecological approach. Harper Collins College Publishers. California, USA. 455 p.
29
Pandya, K.M.; Sarma K.J.; Meenu, k.; Upadhyay, K. and Mankodi, P.C., 2014. Benthic associates of zoanthids on intertidal zone of Saurashtra coast, Gujarat. Electronic Journal of Environmental Sciences. Vol. 7, pp: 13-18.
30
Parsons, T.R.; Takahashi, M. and Hargrave, B., 1977. Biological ocean graphic processes. Porgamon Press Ltd. Oxford, UK. 330 p.
31
Perez, C.D.; Vila Nova, D.A. and Santos, A.M., 2005. Associated community with the zoanthid Palythoa caribaeorum (Duchassaing & Michelotti, 1860) (Cnidaria, Anthozoa) from littoral of Pernambuco, Brazil. Hydro biologia. Vol. 548, No. 1, pp: 207-215.
32
Pohle, W.G. and Thomas, L.H.M., 2001. Monitoring protocol for marine benthos: Intertidal and subtidal macrofauna. A report by the marine biodiversity monitoring committee (Atlantic Maritime Ecological Science cooperative, Huntsman Marine Science Centre) to the ecological Monitoring and Assessment Network of Environment Canada. 25 p.
33
Rezai, H.; Samimi, K.; Kabiri, K.; Kamrani, E.; Jalili, M. and Mokhtari, M., 2010. Distribution and abundance of the corals around Hengam and Farurgan islands, the Persian Gulf. Journal of the Persian Gulf. Vol. 1, pp: 7-16.
34
Samiei, J.V.; Dab, K.; Ghezellou, P. and Shirvani, A., 2013. Some scleractinian corals (Scleractinia: Anthozoa) of Larak Island, Persian Gulf. Zootaxa. Vol. 3636, pp: 101-143.
35
Sebens, K.S., 1982. Intertidal distribution of zoanthids on the Caribbean coast of Panama: effects of predation and desiccation. Bulletin Marine Science. Vol. 32, pp: 316-335.
36
Sinniger, F.; Reimer, J.D. and Pawlowski, J., 2010. The Parazoanthidae (Hexacorallia: Zoantharia) DNA taxonomy: Description of two new genera. Marine Biodiversity. Vol. 40, pp: 57-70.
37
Smith, R.W.; Bergen, M.; Weisberg, S.B.; Cadien, D.; Dalkey, A.; Montagen, D.; Stull, J.K. and Velarde, R.G., 2001. Benthic response index for assessing infaunal communities on the Southern California Mainland Shelf. Ecological Applications. Vol. 11, No. 4, pp: 1073-1087.
38
Stephenson, T.A. and Stephenson, A., 1972. Life between the tidemarks of rocky shores. W.H. Freeman and Company Ltd. California, USA. 425 p.
39
Stull, J.K., and Velarde, R.G., 2001. Benthic response index for assessing infaunal.
40
Taheri, M.; Yazdani Foshtomi, M. and Bagheri, H., 2010. Community structure and biodiversity of intertidal sandy beach macrofauna in Chabahar Bay, Northeast of Oman Gulf, IR Iran. Journal of the Persian Gulf. Vol. 9, No. 1, pp: 17-25.
41
Trivedi, J.N. and Vachhrajani, K.D., 2014. Intertidal distribution of zooxanthellate zoanthids (Cnidaria: Hexacorallia) along the coastal Saurashtra, Gujarat, India. European Journal of Zoological Research. Vol. 3, No. 1, pp: 1-8.
42
Trivedi, J.N., Arya, S. and Vachhrajani, K.D., 2014. Study of the macro faunal associates of the littoral zoanthid Palythoa mutuki (Cnidaria, Anthozoa) from Saurashtra Coast, Gujarat, India. International Journal of Marine Science. Vol. 4, No. 34, pp: 1-9.
43
Webber, H.H. and Thurman, H.V., 1991. Marine biology. S.E. Harper collins college publishers. California, USA. 424 p.
44
Wilhm, J.L. and Dorris, T.C., 1966. Species diversity of benthic macroinvertebrates in a stream receiving domestic and oil refinery eeffluents. American Midland Naturalist. Vol. 76, pp: 427-449.
45
ORIGINAL_ARTICLE
طبقه بندی اکولوژیک زیست گاههای ساحلی – دریایی استان بوشهر (ناحیه مرکزی) بر اساس مدل استاندارد (CMECS) و با به کارگیری سیستم اطلاعات جغرافیایی (GIS)
این تحقیق طی یک دوره نهماه (96-1395) با هدف شناسایی طبقهبندی و کدبندی زیستگاههای ساحلی بندر بوشهر(بخش مرکزی) با استفاده از روش استاندارد طبقه بندی اکولوژیک مناطق ساحلی و دریایی (CMECS) به عنوان جدیدترین مدل طبقهبندی اکولوژیکی انجام گرفت. این تحقیق بر پایه مطالعات کتابخانهایی بررسیهای میدانی نمونهبرداریهای فصلی (جهت مشخص نمودن تأثیرات احتمالی ناشی از تغییرات آب و هوایی) تجزیه و تحلیل تصاویر ماهوارهایی و با به کار گیری GIS صورت گرفت. بر اساس این مدل سه گروه ازلایههای اطلاعاتی مدل CMECS شامل جزء سطح بستر (SC)، جزء ژئومورف سطح (GC) و جزء پوشش زیستی (BC) به کار گرفته شد. با توجه به وسعت منطقه مورد مطالعه و بر اساس ویژگیهای ژئوموفولوژی ساحلی در بیست ایستگاه سیزده کد استاندارد برای ناحیه ساحلی بندر بوشهر شناسایی گردید. تنوع زیستی پایین در ناحیه ساحلی ناشی از افزایش مراکز توسعه صنایع و واحد های خدماتی و وابسته به عنوان بخش های انسان ساخت میباشد که باعث محدود شدن مناطق بکر در ناحیه ساحلی شدهاند. پدیدههای انسان ساخت از عوامل تاثیرگذار بر نوسانات اجتماعات گروههای جانوری و گیاهی در زیستگاههای ساحلی - دریایی استان بوشهر میباشد.
http://www.aejournal.ir/article_73711_fd9f2212ea9af79cdd73ea69729b4b65.pdf
2018-06-22
303
310
زیستگاههای ساحلی
طبقهبندی اکولوژیک
CMECS
بوشهر
خلیج فارس
محبوبه
مهردوست
m.mehrdost@yahoo.com
1
باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد بوشهر، دانشگاه آزاد اسلامی، بوشهر، ایران، صندوق پستی: 44141-75149
LEAD_AUTHOR
فریدون
عوفی
sillaginid@hotmail.com
2
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، تهران، صندوق پستی: 149-14965
AUTHOR
صفورا
بهزادی
s.behzadi700@gmail.com
3
دانشگاه شهید بهشتی، تهران ، صندوق پستی:14451-75317
AUTHOR
انصاری، ز.، 1390. طبقه بندی اکولوژیک نواحی بین جزر و مدی جنوب جزیره قشم بر اساس مدل CMECS و با استفاده از GIS. پایان نامه کارشناسی ارشد، رشته زیست شناسی دریا، دانشگاه تربیت مدرس، تهران. 143 صفحه.
1
بهرامی، ج.، 1392. طبقه بندی زیستگاههای نواحی بین جزر و مدی جزیره هرمز –تنگه هرمز بر اساس مدل CMECS با بکار گیری GIS. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده علوم پایه، دانشگاه هرمزگان. 110 صفحه.
2
رحیمی، م.، 1390. طبقه بندی اکولوژیکی نواحی بین جزر و مدی شمال جزیره قشم بر اساس مدل CMECS و با استفاده از GIS. پایان نامه کارشناسی ارشد، رشته زیست شناسی دریا، دانشگاه تربیت مدرس. 115 صفحه.
3
سواری، ا.؛ جهانپناه، م. و وزیریزاده، ا.، 1389. بررسی تنوع گونهای و غالبیت ده پایانمنطقه بین جزر و مدی سواحل صخرهای بوشهر- خلیجفارس، مجله اقیانوس شناسی، شماره 3، صفحات 7 تا 16.
4
شریفی پور، ف. و عوفی، ف.، 1386. مدیریت زیست محیطی مناطق ساحلی کشور( بررسی وضعیت موجود). سازمان بنادر و دریانوردی، تهران. 93 صفحه.
5
عوفی، ف.؛ وفایی، ف.؛ دانه کار، ا. و ربانی ها، م.، 1387. مدیریت یک پارچه مناطق ساحلی کشور، سازمان بنادر و دریانوردی،تهران. 176 صفحه.
6
مهردوست، م.، 1392. طبقه بندی زیستگاههای نواحی بین جزر و مدی جزیره هنگام –تنگه هرمز بر اساس مدل CMECS با به کار گیری GIS. پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشکده علوم پایه، دانشگاه هرمزگان. 146 صفحه.
7
Beatley, T.D.; Brower, J. and Schwab, A.K., 2002. An introduction to coastal zone management. Second edition,Island press, USA. 329 p.
8
Keefer, M.L.; Peery, C.A.; Wright, N.; Daigle, W.R.; Caudill, C.C.; Claubugh, T.S.; Griffith, D.W. and Zacharias, M.A., 2008. Evaluating the NOAA and marine ecological classification standard in Estuarine System: A Columbia River stuary case study. Estuarine, coastal and shelf science. Vol. 78, pp: 89-106.
9
Loya, Y.; Lubinevsky, H.; Rosenfeld, M. and Kramarsky Winter, E., 2004. Nutrient enrichment caused by in situ fish farms at Eilat, Red Sea is detrimental to benthic community. Marine Pollution Bulletin. Vol. 49, pp: 344-353.
10
Madden, C.J.; Goodin, K.L.; Allee, R.; Finkbeiner, M. and Barnford, D.E., 2008. Coastal and Marine Ecological Classification Standard (Draft). NOAA and Nature Serve. 76 p.
11
Madden, C.J.; Goodin, K.; Allee, R.; Cicchetti, G.; Moses, C.; Finkbeiner, M. and Bamford, D., 2009. Coastal and Marine Ecological Classification Standard (version ІІІ). 123 p.
12
Tyrrell, M.C., 2004. Strategic plan for mapping Massachusetts benthic marine habitats. Boston, Massachusetts Office of Coastal Zone Management.
13
Vanzalling, M., 1997. Biological methods for ecological fisheries studies in tropical zones. FAO. Rome. 98 p.
14
ORIGINAL_ARTICLE
تایپینگ مولکولی کاست کروموزومی SCCmec در سویه های استافیلوکوکوس اورئوس مقاوم به متی سیلین
استافیلوکوکوس اورئوس یکی از عوامل بیماری زای مهم در عفونت های بیمارستانی و خارج بیمارستانی می باشد. افزایش مقاومت استافیلوکوکوس اورئوس به داروهای آنتی بیوتیک یکی از معضلات مهم در درمان بیماران است و به این ترتیب مطالعه مقاومت آنتی بیوتیکی استافیلوکوکوس اورئوس بسیار مهم است.هدف از این مطالعه تایپینگ مولکولی کاست کروموزومی ژن SCCmec در سویه های استافیلوکوکوس اورئوس مقاوم به متی سیلین می باشد. در این مطالعه 106 ایزوله بالینی استافیلوکوکوس اورئوس از نمونه های بالینی بستری در بیمارستان میلاد تهران جمع آوری شدند و با تست های بیوشیمیایی شناسایی گردید. تست حساسیت آنتی بیوتیکی ایزوله استافیلوکوکوس اورئوس به 2 آنتی بیوتیک اگزاسیلین و سفوکسیتین از طریق روش دیسک دیفیوژن بر اساس پروتکل CLSI 2015 مورد برسی قرار گرفت. استخراج ژنومی تمامی ایزوله ها با روش جوشاندن انجام شد وtyping SCCmec با روش PCR و multiplex PCR انجام شد. از مجموع 106 ایزوله استافیلوکوکوس 50 ایزوله (%16/47) MRSA بودند. PCR و تایپینگ نشان داد که تایپ I 11 مورد (22%)، تایپ II 20 مورد (40%)، تایپ III 28 مورد (%56)، تایپ IVa 7 مورد (14%)، تایپ IVb 5 مورد(10%)، تایپ IVc 12 مورد(24%)، تایپV 9 مورد(18%) وتایپ IVd در هیچ نمونه ای یافت نشد. تایپ های مختلف SCCmec وابستگی هایی به محل جداسازی سویه ها دارد و تفاوت هایی در نوع و میزان شدت مقاومت به آنتی بیوتیک های مختلف دارد، در این مطالعه تایپ IVa کمترین تایپ SCCmec بود و بیش ترین تایپ شناسایی شده در این تحقیق مربوط به تایپ III و IIبود که این تایپ عمدتاً ایجاد سویه هایی می کند که عامل بروز مقاومت های چندگانه دارویی است.
http://www.aejournal.ir/article_73726_ed5bed7c75944c4014dc5920726b462d.pdf
2018-06-22
311
318
استافیلوکوکوس های مقاوم به متی سیلین
MRSA
تایپینگ مولکولی
SCCmec
پروانه
عطایی فر
parvaneatayi00@gmail.com
1
گروه ژنتیک، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد ورامین-پیشوا، ایران
AUTHOR
فاطمه
نوربخش
niloofar_noorbakhsh@yahoo.com
2
گروه میکروبیولوژی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد ورامین- پیشوا
LEAD_AUTHOR
شهره
زارع کاریزی
shohrehzare@yahoo.com
3
گروه ژنتیک، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد ورامین-پیشوا، ایران
AUTHOR
Abdollahi, A.; Koohpayeh, S.; Najafipoor, S.; Mansoori, Y.; Abdollahi, S. and Jaafari, S., 2012. Evaluation of drug Resistance and Staphylococcal cassette chromosome (SCCmec) types among methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA). J Alborz Health. Vol. 1, No. 1, pp: 47-52.
1
Adaleti, R.; Nakipoglu, Y.; Karahan, Z.C.; Tasdemir, C. and Kaya, F., 2008. Comparison of polymerase chain reaction and conventional methods in detecting methicillin resistant Staphylococcus aureus. J Infect Dev Ctries. Vol. 2, No. 1, pp: 46-50.
2
Amiri, Z.; Safari, D. and Mousavi, Gh., 2010. SCCmec gene cassette chromosome complex molecular characterization and typing of methicillin resistant Staphylococcus aureus strains isolated from clinical samples martyr Beheshti Hospital during the year. Quarterly Journal of grace. Vol. 4, No. 14, pp: 439-446.
3
Boucher, H.; Miller, L.G. and Razonable, R.R., 2010. Serious Infections Caused by Methicillin Resistant Staphylococcus aureus. Clin Infect Dis. Vol. 51, No. S2, pp: 183-197.
4
Casey, A.L.; Lambert, P.A. and Elliott, T., 2007. Staphylococci. Int J Antimicrob Agents. Vol. 29, No. 3, pp: S23-S32.
5
Chung, T.P.: Ito, T. and Ma, X.X., 2006. Staphylococcal cassette chromosome mec (SCCmec) typing of methicillin-resistant Staphylococcus aureus strains isolated in 11 Asian countries: a proposal for a new nomenclature for SCCmec elements. Antimicrob. Agents. Chemother. Vol. 50, pp: 1001-1012.
6
Da silva, E.R.; Boechat, J.U.D. and Da Silva, N., 2006. Coagulase polymorphism of Staphylococcus aureus isolated from goat mastitis in Brazilian dairy herds. Latters in Appleid Microbiology. Vol. 42, pp: 30-34.
7
Fatholahzadeh, B.; Emaneini, M.; Gilbert, G.; Udo, E.; Aligholi, M.; Modarressi, M.H.; Nouri, K.; Sedaghat, H. and Feizabadi, M.M., 2008. Staphylococcal cassette chromosome mec (SCCmec) analysis and antimicrobial susceptibility patterns of methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) isolates in Tehran, Iran. Microb Drug Resist. Vol. 14, No. 3, pp: 217-220.
8
Ghaznavi-Rad, E.; Nor Shamsudin, M.; Sekawi, Z.; van Belkum, A. and Neela, V., 2010. A simplified multiplex PCR assay for fast and easy discrimination of globally distributed staphylococcal cassette chromosome mec types in meticillinresistant Staphylococcus aureus. Journal of Medical Microbiology. Vol. 59, pp: 1135-1139.
9
Hwwari, A.; Hendrix, E.; Hebden, J.; Edelman, R.; Martin, M. and Campbell, W., 1998. Phenoytpic and genotypic characterization of nosocomial Staphylococcus aureus isolates from trauma patients. J Clin Microbiol. Vol. 36, pp: 414-420.
10
Ishino, K.; Tsuchizaki, N.; Isheikawa, J. and Hotta, K., 2007. Usefulness of PCR-RFLP typing of the coagulase gene to discriminate Arbekacin resistant methicillin resistant Staphylococcus aureus strains. Journal of Clinical Microbiology. Vol. 45, No. 2, pp: 607-609.
11
Ito, T.; Okuma, K.; Ma, X.X.; Yuzawa, H. and Hiramatsu, K., 2003. Insights on antibiotic resistance of Staphylococcus aureus from its whole genome: genomic island SCC.Drug Resist Updat. Vol. 6, No. 1, pp: 41-52.
12
Ito, T.; Katayama, Y. and Asanda, K., 2001. Structural comparison of three types of staphylococcal cassette chromosome mec integrated in the chromosome in methicillin resistant Staphylococcus aureus. Antimicrob Agents Ch. Vol. 45, No. 12, pp: 1323-1326.
13
Japoni, A.; Alborzi, A.; Orafa, F.; Rasoli, M. and Farshad, S., 2004. Distribution patterns of methicillin resistance genes (mecA) in Staphylococcus aureus isolated from clinical specimens. Iran Biomed J. Vol. 8, pp: 173-178.
14
Mahon, C.R.; Lehman, D.C. and Manuselis, G., 2007. Staphylococcus saprophyticus identification. Diognostic microbiology.3 th ed, st Louis, MO: Sauders Elsevier. pp: 369-380.
15
Momtaz,H.;Tajbakhsh,E.andRahimi, E., 2011. Coagulase gene polymorphism of Staphylococcus aureus isolated from clinical and sub clinical bovine mastitis in Isfahan and Chaharmahal va Bakhtiari provinces of Iran. Comp Clin Pathol. pp: 20-29.
16
Moon, J.S.; lee, A.R.; Kang, H.M.; Lee, E.S.: Kim, M.N.; PALK, Y.H. and Joo, Y.S., 2007. Phenotipic and genetypic antibiogram of methicillin resistant staphylococcus aureus isolated from bovine mastitis in korea. J paing Sci. Vol. 90, pp: 1176-1185.
17
Nasonova, E.S., 2008. Pulsed field gel electrophoresis: theory, instruments and applications. Tsitologiia. Vol. 50, No. 11, pp: 927-935.
18
Noto, M.J. and Archer, G.L., 2006. A subset of Staphylococcus aureus strains harboring staphylococcal cassette chromosome mec (SCCmec) type IV is deficient in CcrAB-mediated SCCmec excision. Antimicrob Agents Chemother. Vol. 50, pp: 2782-2788.
19
Novick, R.P.; Schlievert, P. and Ruzin, A., 2001. Pathogenicity and resistance islands of staphylococci. Microbes Infec. Vol. 3, No. 7, pp: 585-594.
20
Peng, Q.; Hou, B.; Zhou, S.; Huang, Y. and Hua, D., 2010. Staphylococcal Cassette choromosome mec (SCCmec) analysis and antimicrobial susceptibility profiles of methicillin resistant Staphylococcus aureus (MRSA) isolates in a teaching hospital, Shantou, China. African J Microbiol Research. Vol. 4, No. 9, 848 p.
21
Rahbar, M.; Yaghoobi, M. and Fattahi, A., 2006. Comparison of Different Laboratory Methods for Detection of Methicillin Resistant Staphylococcus aureus. Pak J Med Sci. Vol. 22, No. 4, pp: 442-445.
22
Reza Zadeh, M.; Ghaznavi Rad, E.; Yousefi, D. and Sarmadian, D., 2014. Comparison of the two disk diffusion method and polymerase chain reaction (PCR) to detect methicillin-resistant S. aureus strains. In South Medical journal. Vol. 3, No. 17, pp: 280-289.
23
Takano, T.; Higuchi. W.; Otsuka, T.; Baranovich, T.; Enany, S. and Saito, K., 2008. Novel characteristics of community-acquired methicillin resistant Staphylococcus aureus belonging to multilocus sequence type 59 in Taiwan. Antimicrob Agents Chemother. Vol. 52, No. 3, pp: 837-845.
24
Tenover, F.C. and Moellering, R.C., 2007. The Rationale for Revising the Clinical and Laboratory Standards Institute Vancomycin Minimal Inhibitory Concentration Interpretive Criteria for Staphylococcus aureus. Clin Infec Dis. Vol. 44, No. 9, pp: 1208-1215.
25
Thong, K.l.; Jumie, j.; liew, F.Y.; Yusof, M.Y. and Hanifah, Y.A., 2009. Antibiograms and molecular subtypes of methicillin resistant staphylococcus aureus in local teching hospital, Malaysia. J Microbiol Biotechnol. Vol. 19, pp: 1265-1270.
26
Warsa, U.C.; Okubo, T. and Okamoto, R., 1996. Antimicrobial susceptibilities and phage typing of Staphylococcus aureus clinical isolates in Indonesia. Journal of Infection and Chemotherapy. Vol. 2, No. 1, pp: 29-33.
27
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تغییرات فصلی آنزیم گلوتاتیون اس ترانسفراز کاتالاز و استیل کولین استراز در اندازههای مختلف صدف دوکفهای مرواریدساز Pinctada radiata
تحقیق حاضر جهت اندازهگیری میزان غلظت آنزیم گلوتاتیون اس ترانسفرازکاتالاز و استیل کولین استراز به عنوان نشانگرهای آلاینده فلزات سنگین در صدف دوکفهای مرواریدساز محار (Pinctada radiata)انجام گرفته است. نمونه برداری از بهار تا زمستان سال 1392 به روش غواصی در ایستگاههای لاوان، هندورابی و نخیلو انجام شد که در طی نمونه برداری صدف های با اندازه کوچک (4-1سانتیمتر) و بزرگ (6-4 سانتیمتر) جمعآوری گردیدند. برای اندازهگیری میزان غلظت فلزات سنگین از روش استاندارد Moopam، برای اندازهگیری آنزیم گلوتاتیون اس ترانسفراز از روش Habig، برای اندازهگیری آنزیم استیل کولین استراز از روش Ellman و برای اندازهگیری غلظت آنزیم کاتالاز از روش Abei استفاده گردید. میزان غظت آنالیز فلزات سنگین نیکل، کادمیوم و سرب در بافت نرم صدف محار(Pinctada radiata) درهرسه ایستگاه به ترتیب 0/12±0/58، 0/04±1/86 و 0/30±1/94 قسمت در میلیون میباشد، که نتایج نشان داد غلظت فلز سرب در رسوبات ایستگاه دارای اختلاف معنی دار میباشد. غلظت آنزیم استیل کولین استراز در ایستگاههای مختلف و در بین اندازههای بزرگ و کوچک و در بین دو فصل اختلاف معنی داری با یکدیگر نداشتند. تغییرات دو آنزیم کاتالاز و گلوتاتیون اس ترانسفراز تقریباً مشابه یکدیگر بوده و ایستگاه و فصل هر دو پارامتر اختلاف معنی داری بر میزان غلظت این آنزیمها داشتند. تغییرات فصلی آنزیمهای آنتی اکسیدان (با فرض ثابت بودن شوری و اکسیژن) به سن، چرخه تولیدمثل، در دسترس بودن میزان غذا و دمای آب مرتبط است. با افزایش دما در فصل گرم میزان آنزیمهای آنتی اکسیدان افزایش یافته، با افزایش دما و فراوانی غذا در محیط ممکن است میزان آنزیمهای آنتی اکسیدان افزایش یابد. با توجه به میزان کم آلایندههای فلزات سنگین در مناطق مورد مطالعه، سطح پایین تری از آلایندهها در بافت صدف محار (Pinctada radiata) از نظر استاندارهای جهانی مشاهده گردید و ارتباط قوی نیز بین میزان این آلاینده فلزات سنگین در بافت صدف محار (Pinctada radiata) و میزان آنزیمهای مورد مطالعه مشاهده نشد، لذا میزان آلایندههای گونه مورد مطالعه در حد طبیعی میباشد و گونه در وضعیت سالمی به سر میبرد.
http://www.aejournal.ir/article_86935_d406443630f96ce7b24aa0f59efbc335.pdf
2018-06-22
319
330
Pinctada radiata
خلیج فارس
آنزیم گلوتاتیون اس ترانسفراز
استیل کولین استراز
کاتالاز
فلزات سنگین
الهه
علی عسگری
e.asgari@gmail.com
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
علی
ماشینچیان مرادی
ali2m@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
فریبرز
احتشامی
ehteshamei@yahoo.com
3
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
شهلا
جمیلی
shahlajamili45@yahoo.com
4
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
محمد
ربانی
mhd_rabani@yahoo.com
5
گروه شیمی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال، تهران، ایران
AUTHOR
اسماعیلی تاجیک، ف.، 1388. بررسی سطوح آنزیمهای ضداکسیداسیون در بارناکل به عنوان شاخص زیستی آلودگی فلزات سنگین (Ni,V,Cd) در خلیج فارس-جزیره خارک. پایان نامه کارشناسی ارشد مدیریت محیط زیست. دانشکده محیط زیست و انرژی. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات.
1
امتیازجو، م.، 1379. بررسی تنوع زیستی و پتانسیل تولید مواد زیستی فعال از سیانوباکتریهای خلیج فارس. پایاننامه دکتری بیولوژی دریا. دانشگاه آزاد واحد علوم و تحقیقات تهران.
2
حسین زاده صحافی، ه.؛ دقوقی، ب. و رامشی، ح.، 1379. اطلس نرم تنان خلیج فارس. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 248 صفحه.
3
حیدری چهارلنگ، ب.؛ ریاحی بختیاری، ع. و یاوری، و.، 1390. بررسی غلظت فلزات سنگین (Pb,Zn,CdوCu) در رسوبات سطحی سواحل بندرلنگه. پنجمین همایش تخصصی مهندسی محیط زیست
4
دبیری، م.، ۱۳۷۹. آلودگی محیط زیست آب، خاک، هوا، صوت. انتشارات اتحاد .۴۰۰ صفحه.
5
ذوالقدری قره بلاغ، ص.،1382. اثرات فلزات سنگین بر روی آبزیان. پایان نامه کارشناسی، دانشکده علوم و فنون دریایی.
6
صفاهیه، ع.؛ عبداله پورمنیخ، ف. و سواری، ا.، 1390. غلظت فلزات سنگین در رسوب و ماهی شبه شوریده (Johnius belangerii) صید شده از خور موسی در استان خوزستان. مجله شیلات، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد آزادشهر. شماره 5، صفحات 22 تا 34.
7
مرتضوی، ش.؛ اسماعیلی ساری، ع. و ریاحی بختیاری، ع.، 1384. تعیین نسبت نیکل و وانادیوم ناشی از آلودگیهای نفتی در صدف خوراکی و مرواریدساز در حاشیه سواحل، استان هرمزگان. مجله منابع طبیعی. جلد 58، شماره 1، صفحات 17 تا 28.
8
Aebi, H., 1974. Catalase. In: Bergmeyer HV, editor. Method sin enzymatic analysis. Vol. l2, NewYork: Acadamicpress.
9
Ahmad, S.; Pritsos, C.A.; Bowen, S.M.; Heisler, C.R.; Blomquist, G.J. and Pardini, R.S., 1988. Subcellular distribution and activities of superoxide dismutase, Catalase, glutathione peroxidase and glutathione reductase in the southern armyworm, spodopthera eridania. Arch Insect Bio Chem Physiol. Vol. 7, pp: 173-186.
10
Ahmad, A.K. and Shuhaimi-Othman, M., 2010. Heavy metal concentration in sediments and fishes from Lake Chini, Pahang, Malaysia. Journal of Biological Sciences. Vol. 10, No. 2, pp: 93-100.
11
Al-Mafda, H.; Abdel-Moati, M.A.R. and Al-Gimaly, F.H., 1998.Pinctada radiate (Pearl Oyster): A Bioindicator for Metal Pollution Monitoring in the Qatari Waters (Arabian Gulf). Bull. Environm. Contam Toxicol. Vol. 60, pp: 245-251.
12
Bagnyukova, T.V.; Chahrak, O.I. and Lushchak, V.I., 2006. Coordinated response of goldfish antioxidant defenses to environmental stress. Aquat. Toxicol. Vol. 78, No. 4, pp: 325-331.
13
Banni, M.; Negri, A.; Dagnino, A.; Jebali, J.; Ameur, S. and Boussetta, H., 2010. Acute effect sofbenzo[a] pyreneon digestive gland enzymatic biomarkers and DNA damageonmussel Mytilus galloprovincialis. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 73, pp: 842-848.
14
Borković, S.S.; Šaponjić, J.S.; Pavlović, S.Z.; Blagojević, D.P. and Milošević, S.M., 2005. The activity of antioxidant defence enzymes in the mussel Mytilus galloprovincialis from the Adriatic Sea. Comp Biochem Physiol. Vol. 141, pp: 366-374.
15
Borg, D.C. and Schaich, K.M.; 1984. Cytotoxicity from coupled redox cycling of autoxidizing xenobiotics and metals. Israel J. Chem. Vol. 24, pp: 38-53.
16
Cailleaud, K.; Maillet, G.; Budzinski, H.; Souissi, S. and Forget-Leray, J., 2007. Effects of salinity and temperature on the expression of enzymatic biomarkers in Eurytemora affinis (Calanoida, Copepoda). Comp. Biochem. Physiol. Vol. 147, pp: 841-849.
17
Clark, R.B., 2001.Marine Pollution. 5th Edition, Oxford University Press. 237 p.
18
Cossu, C.; Doyotte, A.; Babut, M.; Exinger, A. and Vasseur, P., 2000. Antioxidant biomarkers in freshwater bivalves, unio tumidus, in response to different contamination profiles of aquatic sediments. Ecotoxicol. Environ. Saf. Vol. 45, pp: 106-121.
19
Ellman, G.L.; Courtney, K.D.; Andres, V.J. and Featherstone, R.M., 1961. A new and rapid colorimetric determination of acetylcholinesterase activity, Biochem. Pharmacol. Vol. 7, pp: 88-95.
20
Elumalai, M. and Balasubramanian, M.P., 1999. Influence of naphthalene on esterase activity during vitellogenesis of marine edible crab, Scylla sarrata. Bull Environ Contam Toxicol. Vol. 62, No. 6, pp:743-748.
21
Frenzilli, G.; Lasagna, C.; Perrone, E. and Roggie, P., 2004. enotoxicity biomarkers in Mytilus galloprovincialis: wild versus caged mussels. Mutat. Res. Vol. 552, pp: 153-162.
22
Jing, R.; Bolshakov, V.I. and Flavell, A.J., 2007. The tagged microarray marker (TAM) method for high throughput detection of single nucleotide and indel polymorphisms. Nat. Protoc. Vol. 2, pp: 168-177.
23
Geret, F.; Serafim, A.; Barreira, L. and Bebianno, M.J., 2002. Effect of cadmium on antioxidant enzyme activities and lipid peroxidation in the gills of the clam Ruditapes decussatus. Biomarkers. Vol. 7, pp: 242-256.
24
Giarratano, E.; Gil, M.N. andMalanga, G., 2013. Assessment of antioxidant responses and trace metal accumulation by digestive gland of ribbed mussel Aulacomya atra atra from Northern Patagonia. Ecotoxicol Environ Saf. Vol. 92, pp: 39-50.
25
Giguère, A.; Couillard, Y.; Campbell, P.G.C.; Perceval, O.; Hare, L.; Pinel-Alloul, B. and Pellerin, J., 2003. Steady-state distribution of metals among metallothionein and other cytosolic ligands and links to cytotoxicity in bivalves living along a polymetallic gradient. Aquat Toxicol Vol. 64, pp: 185-200.
26
Habig, W.H.; Pabst, M.J. and Jakoby, W.B., 1974. Glutathione-S-transferases, the first enzymatic step in mercapturic acid formation. J. Biol. Chem. Vol. 249, pp: 7130-7139.
27
Hagger, J.A.; Lowe, D.; Dissanayake, A.; Jones, M.B. and Galloway, T.S., 2010. The influence of seasonality on biomarker responses in Mytilus edulis. Ecotoxicology. Vol. 19, pp: 953-962.
28
Hayes, J.D. and Pulford, D.J., 1995. The Glutathione-S transferase family: regulation of GST and the contribution of the isoenzymes to cancer chemoprevention and drug resistance. Crit. Review Biochem. Molecul. Biol. Vol. 30, pp: 445-600.
29
Hédouin, L.; Metian, M.; Teyssié, J.L.; Fowler, S.W.; Fichez, R. and Warnau, M., 2006. Allometric relationships in the bioconcentration of heavy metals by the edible tropical clam Gafrarium tumidum. Science of the Total Environment, Vol. 366, pp: 154-163.
30
Khessiba, A.; Hoarau, P.; Gnassia-Barelli, M.; Aissa, P. and Roméo, M., 2001. Biochemical response of the mussel Mytilus galloprovincialis from Lake Bizerte (Tunisia) with exposure to chemical pollutants Arch. Environ. Contam. Toxicol. Vol. 40, pp: 222-229.
31
Krogh, M. and Scanes, P., 1996. Organochlorine compound and trace metal contaminants in fish near Sydney,s Ocean out full. Marin Pollution Bulletin. Vol. 33, No. 7-12, pp: 213-235.
32
Lamanso, R.; Cheung, Y. and Chan, K.M., 1991. Metal concentration in the tissues of rabbit fish collected from Tolo Harbour in Hong kong, Marine Pollution Bulletin. Vol. 39, pp: 123-134.
33
Lima, I. and Moreira, S.M., 2007. Biochemical responses of the marine mussel Mytilus galloprovincialis to petrochemical environmental contamination along the North western cost of Portugal. Chemosphere. Vol. 66, pp: 1230- 1242.
34
Livingstone, D.R., 1993. Contaminant stimulated reactive oxygen species production and oxidative damage in aquatic organisms. Mar Pollut Bull. Vol. 42, pp: 656-666.
35
Livingstone, D.R., 2013. Acetylcholinesterase, glutathione S-transferase activities and pattern of recovery. Eur J Exp Biol. Vol. 3, No. 2, pp: 54-56.
36
Lukyanova, O.N. and Korchagin, V.P., 2011. Glutathione S-transferase as a molecular biomarker of the state of marine organisms influenced by anthropogenic pressure Biology Bulletin. Vol. 38, No. 4, 386 p.
37
Nahrgang, J.; Camus, L.; Gonzalez, P.; Jönsson, M. and Hop, H., 2010. Biomarker responses in polar cod (Boreogadus saida) exposed to dietary crude oil, Aquatic Toxicology. Vol. 96, No. 1, pp: 77-83.
38
Páez-Osuna, F. and Ruíz-Fernández, C., 1995. Trace metals in the mexican shrimp Penaeus vannamei from estuarine and marine environments. Archives of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 87, No. 2, pp: 243-247.
39
Regoli, F.; Orlando, E.; Mauri, M.; Nigro, M. and Cognetti, G.A., 1995. Heavy metal accumulation and calcium content in the bivalve Donacilla cornea. Mar. Ecol. Prog. Ser. Vol. 74, pp: 219-224.
40
Regoli, F.; Winston, G.W.; Gorbi, S.; Frenz illi, G.; Nigro, M.; Corsi, I. and Focardi, S., 2004. Integrating enzymatic responses to organic chemical exposure with total oxyradical absorbing capacity and DNA damage in the European eel Anguilla anguilla. Environ. Toxicol. Chem. Vol. 22, pp: 56-65.
41
Reid, D.J. and Maefarlane, G.R., 2003. Potential biomarkers of crude oil exposure in the gastropod mollusc, Austrocochlea poecata: Laboratory and manipulative field studies. Environmental Pollution. Vol. 12, pp: 147-155.
42
Rosa, M.M.; Amila, E.M. and Ana, S., 2005. Antioxidant defencees in fish: Biotic and abiotic factors. Review in fish Biology and fisheries. Vol. 15, pp: 75-88.
43
Rudneva, I.I.; Zavyalov, A.V. and Skuratovskaya, E.N., 2010, The role of molecular systems in protective reactions of fish infected by parasites. Ryb. gosp-vo Ukraini, Russian.
44
Santovito, G.; Piccinni, E.; Cassini, A.; Irato, P. and Albergoni, V., 2005. Antioxidant responses of the Mediterranean mussel, Mytilus galloprovincialis, to environmental variability of dissolved oxygen. Comp. Biochem. Physiol. Vol. 140, pp: 321- 329.
45
Sifi, K.; Amira, A. and Soltani, N., 2013, Oxidative stress and biochemical composition in Donax trunculus (Mollusca, Bivalvia) from the gulf of Annaba (Algeria). Adv Environ Biol. Vol. 7, No. 4, pp: 595-604.
46
Stohs, S.J. and Bagchi, D., 1995. Oxidative mechanisms in the toxicity of metal ions. Free Radic Biol Med. Vol. 18, pp: 321-336.
47
Torres, M.A.; Dangl, J.L. and Jones, J.D., 2002. Arabidopsis p91phox homologues AtrbohD and AtrbohF are required for accumulation of reactive oxygen intermediates in the plant defense response. Proc Natl Acad Sci USA. Vol. 99: pp: 517-522.
48
Viarengo, A.; Canesi, L.; Pertica, M. and Livingstone, D.R., 1991. Seasonal variations in the antioxidant defence systems and lipid peroxidation of the digestive gland of mussels. Comp. Biochem. Physiol. Vol. 100, pp: 187-190.
49
Vlahogianni, T.; Dassenakis, M.; Scoullos, M.J. and Valavanidis, A., 2007, Integrated Use of Biomarkers (Superoxide Dismutase, Catalase and Lipid Peroxidation) in Mussels Mytilus galloprovincialis for Assessing Heavy Metals’ Pollution in Coastal Areas from the Saronikos Gulf. Journal of Chemical Ecology. Vol. 23, pp: 361-371.
50
Wright, D.A., 1995. Trace metal and major ion interactions in aquatic animals. Marine Pollution Bulletin. Vol. 31, pp: 8-18.
51