ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی زیستگاههای کلیدی برای حفاظت از خرس قهوهای (Ursus Arctos) در دامنه شمالی البرز
خرس قهوهای (Ursus Arctos) در بین همه گونههای خرس در دنیا بیش ترین پراکندگی را داشته و در اروپا، آسیا و آمریکای شمالی دیده میشود. این گونه بزرگجثهترین گوشت خوار ایران است که پراکنش وسیعی بهویژه در مناطق کوهستانی دارد. بزرگ ترین جمعیت و بیش ترین فراوانی آن در ایران در امتداد رشته کوه البرز به ویژه در مناطق جنگلهای مرتفع در استانهای مازندران و گلستان بهویژه در منطقه حفاظتشده البرز مرکزی و پارک ملی گلستان است. از این رو برای افزایش دانش جهت حفاظت از جمعیتهای باقیمانده، بهویژه در مناطق حفاظتشده، در این بررسی به شناسایی زیستگاههای مطلوب گونه در محدوده جنگلهای هیرکانی در استانهای گلستان، گیلان و مازندران و پیشبینی عوامل موثر در این پراکندگی پرداخته شد. بررسی مطلوبیت زیستگاه گونه با روش حداکثر بینظمی، مساحتی معادل 59% از محدوده مورد مطالعه برای زیست گونه را مطلوب تشخیص داده است. تجزیه و تحلیلها نشان داد که خرس قهوهای زیستگاههای با شیب و پوشش گیاهی بالا را انتخاب میکند که این امر در ارتباط با دامنههای شمالی بیش تر صادق است. هرچه بر دما افزوده شود از مطلوبیت زیستگاه گونه کاسته خواهد شد. هم چنین در طراحی مناطق حفاظتشده میبایست فاصله از مناطق انسانی و روستاها لحاظ شود.
http://www.aejournal.ir/article_79439_f6eefd2b99e192ef8861060257863ccd.pdf
2018-09-23
1
8
خرس قهوهای
گوشت خوار
مطلوبیت زیستگاه
رشته کوه البرز
شیب
فرنوش
کوچالی
farnoushkouchali@gmail.com
1
گروه طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، سازمان حفاظت محیط زیست، کرج، صندوق پستی: 118-31746
AUTHOR
باقر
نظامی بلوچی
nezamibagher@gmail.com
2
گروه طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، سازمان حفاظت محیط زیست، کرج، صندوق پستی: 118-31746
AUTHOR
حمید
گشتاسب
meigooni1959@gmail.com
3
گروه طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، سازمان حفاظت محیط زیست، کرج، صندوق پستی: 118-31746
LEAD_AUTHOR
بهزاد
رایگانی
behzad.rayegani@gmail.com
4
گروه طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، سازمان حفاظت محیط زیست، کرج، صندوق پستی: 118-31746
AUTHOR
اسماعیلی،ح. وکمی،ح.،1384. گزارش طرح پژوهشی بررسی وضعیت و پراکنش خرس قهوهای در استان فارس. سازمان حفاظت محیط زیست، اداره کل حفاظت استان فارس.
1
پاکنیت، د.؛ همامی، م.؛ ملکی، س. و توحیدی، م.، 1395. تأثیر عوامل محیطی بر پراکنش زیستگاههای مطلوب جمعیتهای زمستان گذران هوبره آسیایی در فلات مرکزی ایران. بوم شناسی کاربردی. دوره ۵، شماره ۱۷، صفحات ۷۷ تا ۸۹.
2
پروژه مدیریت چندمنظوره جنگلهای هیرکانی. 1396. http://chfp.ir (سازمان جنگلها، مراتع و آبخیزداری).
3
تک تهرانی، ع.، 1392. تحلیل انتخاب زیستگاه شاه روباه (Vulpes cana) در ایران، مبتنی بر روش مکسنت و گارپ. پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشکده محیط زیست و انرژی. دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات تهران. 90 صفحه.
4
درویش صفت،ع.،1385. اطلس مناطق حفاظت شده ایران. انتشارات دانشگاه تهران.
5
زارعی، ع.، 1391. بوم شناسی لانههای زمستان گذرانی خرس قهوهای (Ursus arctos syriacus) در منطقه کوه خم استان فارس (جنوبغربی ایران). پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده محیط زیست و انرژی. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران.
6
زارعی،ع.؛ عابدی، س.؛محمودی،م.وپیروی لطیف، ش.، 1394. ارزیابی زیستگاه زمستان خوابی خرس قهوه ای سوری (Ursus arctos syriacus) با استفاده از مدل سازی خطی تعمیم یافته (GLM) و رگرسیون وزنی جغرافیایی(GWR) در جنوب ایران. بوم شناسی کاربردی. سال 4، شماره 14، صفحات 85 تا 75.
7
عبیداوی، ز.؛ رنگزن، ک.؛ میرزایی، ر. و کابلیزاده، م.، 1395. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه خرس قهوهای (Ursus arctos) در منطقه حفاظت شده شیمبار، استان خوزستان. بومشناسی کاربردی. دوره 5، شماره 4، صفحات 71 تا 61.
8
عطایی، ف.، 1388. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه تاﺑﺴﺘﺎﻧﻪ ﺧﺮس ﻗﻬﻮهای در ﻣﻨﻄﻘﻪ ﺣﻔﺎﻇﺖ ﺷﺪه اﻟﺒﺮز ﺟﻨﻮﺑﯽ ﻣﺒﺘﻨﯽ ﺑﺮ روﯾﮑﺮد ﺗﺤﻠﯿﻞ آﺷﯿﺎن ﺑﻮمشناختی (ENFA). پایانﻧﺎﻣﻪ ﮐﺎرﺷﻨﺎﺳﯽارﺷﺪ.داﻧﺸﮕﺎه آزاد اﺳﻼﻣﯽ واﺣﺪ ﻋﻠﻮم و ﺗﺤﻘﯿﻘﺎت تهران.
9
عطایی،ف.؛کرمی،م. و کابلی، م.، 1391. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه تابستانه خرس قهوهای (Ursus arctos syriacus)در منطقه حفاظت شده البرز مرکزی. نشریه محیط زیست طبیعی، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 65، شماره 2، صفحات 245 تا 235.
10
غلامحسینی،ق.؛اسماعیلی،ح.؛آهنی،ح.؛تیموری،آ.؛ابراهیمی،م.؛کمی،ح.وظهرابی،ح.، 1389. بررسی عوامل توپوگرافیکی و اقلیمی بر پراکنش خرس قهوه ای(Ursus arctos) (Linnaeus, 1758) (Carnivora: Ursidae) در استان فارس با استفاده از سامانه اطلاعات جغرافیایی .(GIS) مجله زیست شناسی ایران. جلد23، شماره2، صفحات233 تا 215.
11
کرمانی، ف.؛ رایگانی، ب.؛ نظامی بلوچی، ب؛ گشتاسب، ح.؛ خسروی، ح. و حیدری، ح.، 1396. ارزیابی شاخصهای محیط زیستی در انتخاب زیستگاه یوزپلنگ آسیایی (Acinonyx jubatus venaticus) به کمک دادههای سری زمانی دورسنجی (مطالعه موردی: مجموعه حفاظتی توران). محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 1، صفحات 1 تا 12.
12
کمایی،م.،1392. ارزیابی اثر کاربری اراضی بر مطلوبیبت زیستگاه خرس قهوه ای درمنطقه حفاظت شده البرزمرکزی. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران.
13
کوچالی، ف.، 1394. بررسی پراکنش و عوامل تهدید خرس قهوهای در ایران. پایان نامه کارشناسی، دانشکده محیط زیست کرج.
14
نظامی، ب.، 1387. بوم شناسی خرس قهوهای در محدوده امن البرز مرکزی. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه علوم و تحقیقات تهران.
15
نظامی،ب.،1393. بررسی عادت های غذایی فصلی خرس قهوه ای سوری (Ursusarctos)درمنطقه حفاظتشده البرز مرکزی. تاکسونومی و بیوسیستماتیک. سال 6، شماره 19، صفحات 36 تا 27.
16
نظامی، ب.؛ عطایی، ف.؛ یوسفی، م. و کفاش، ا.، 1395. مطالعه توزیع، اندازه جمعیت و مطلوبیت زیستگاه خرس قهوهای در منطقه حفاظت شده البرز مرکزی. اداره کل حفاظت محیط زیست استان البرز.
17
نظامی، ب.؛ عطایی، ف.؛ حیدری، ح.؛ اسحاقی، ر.؛ نعیمایی، ر. وعلیزاده، ا.، 1396. مناطق کلیدی جهت حفاظت از خرس قهوهای ماده در البرز مرکزی. محیط زیست جانوری تجربی. دوره 6، شماره 3، صفحات 127 تا 141.
18
همامی، م.؛ اسماعیلی، س. و سفیانیان، ع.، 1394. پیشبینی پراکنش یوزپلنگ آسیایی، پلنگ ایرانی و خرس قهوهای در پاسخ به متغیرهای محیطی در استان اصفهان. بومشناسی کاربردی. دوره 4، شماره 13، صفحات 63 تا51.
19
یوسفی، غ.؛ خلعتبری، ل.؛ صارمی، ص.؛ مبرقع، م.؛ محمدی، م.؛ پورمحمد، ف. و یوسفی، ح.، 1395. برنامه عمل (راهبردی) برای حفاظت از خرس قهوهای Ursus arctos در ایران، کانون پژوهش و حفاظت از طبیعت محیط بان، سازمان حفاظت محیط زیست.
20
Ahmadi, M. and Heydari, H.R., 2012. Identify and assessment of efficiency and priority of the Asiatic cheetah habitats conservation in Central Plateau of Iran. Conservation of Asiatic cheetah Project. Department of Environment. Tehran. Iran.
21
Amberli, H.; Erturk, A. and Soyumert, A., 2016. Current status, distribution, and conservation of brown bear and wild canids (gray wolf, golden jackal, and red fox; Canidae) in Turkey. Turkish Journal of Zoology. Vol. 40, pp: 944-956.
22
Clevenger, A.P.; Purroy, F.J. and Campos, M.A., 1997. Habitat assessment of a relict Brown bear (Ursus arctos) population in northern Spain. Biological Conservation. Vol. 80, No. 1, pp: 17-22.
23
Delibes, M., Gaona, P. and Ferreras, P., 2001. Effects of an attractive sink leading into maladaptive habitat selection. American Naturalist; Vol. 158, No. 3, pp: 277-285.
24
DeNormandie, J. and Edwards, T.C., 2002. The Umbrella Species Concept and Regional Conservation Planning in Southern California: A Comparative Study. Conservation Biology.
25
Elith, J.; Graham, C.H.; Anderson, R.P.; Dudik, M.; Ferrier, S.; Guisan, A.; Hijmans, R.J.; Huettmann, F.; Leathwick, J.R.; Lehmann, A.; Li, J.; Lohmann, L.G.; Loiselle, B.A.; Manion, G.; Moritz, C.; Nakamura, M.; Nakazawa, Y.; Overton, J.M.; Peterson, A.T.; Phillips, S.J.; Richardson, K.; Scachetti-Pereira, R.; Schapire, R.E.; Soberon, J.; Williams, S.; Wisz, M.S. and Zimmermann, N.E., 2006. Novel methods improve prediction of species’ distributions from occurrence data. Ecography. Vol. 29, No. 2, pp: 129-151.
26
Ferguson, S.H. and McLoughlin, P.D., 2000. Effect of energy availability, seasonality, and geographic range on Brown bear life history. Ecography. Vol. 23, pp: 193-200.
27
Franklin, J., 2010. Mapping Species Distributions: Spatial Inference and Prediction. Cambridge University Press, Cambridge, UK.
28
Güthlin, D.; Knauer, F.; Kneib, T.; Küchenhoff, H.; Kaczensky, P.; Rauer, G.; Jonozovic, M.; Mustoni, A. and Jerina,K.,2011. Estimating habitat suitability and potential population size for brown bears in the Eastern Alps. Biological Conservation. Vol. 144, No. 5, pp: 1733-1741.
29
Gutleb, B. and Ziaie, H., 1999. On the distribution and status of the Brown Bear and the Asiatic Black Bear, U. thibetanus, in Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 18, No. 1, pp: 5-8.
30
Hepcan,S.,2000. A methodological approach for designating management zones in spil mountain National Park, Turkey. Environmental Management. Vol. 26, No. 3, pp: 329-338.
31
Hilderbrand, G.V.; Jacoby, M.E.; Schwartz, C.C.; Arthur, S.M.; Robbins, C.T.; Hanley, T.A. and Servheen, C., 1999. The importance of meat, particularly salmon, to body size, population productivity, and conservation of North American Brown bears. Canadian Journal of Zoology. Vol. 77, No. 1, pp: 132-138.
32
IUCN. The World Conservation Union. 1992. Annual report. 35 p.
33
Katajisto, J., 2006. Habitat use and population dynamics of brown bears (Ursus arctos) in Scandinavia PhD dissertation. University of Helsinki, Helsinki.
34
Mandle, L.; Warren, DL.; Hoffmann, MH.; Peterson, AT.; Schmitt, J. and von Wettberg, EJ., 2010. Conclusions about Niche Expansion in Introduced Impatiens walleriana Populations Depend on Method of Analysis. PLoS ONE. Vol. 5, No. 12, pp: 1-9.
35
Martin, J.; Revilla, E.; Quenette, P.Y.; Naves, J.; Allainé, D. and Swenson, J.E., 2012. Brown bear habitat suitability in the Pyrenees: transferrability across sites and linking scales to make the most of scarce data. Journal of Applied Ecology. Vol. 49, No. 3, pp: 621-631.
36
Mattson, D.J. and Merrill, T., 2002. Extirpations of grizzly bears in the contiguous United States, 1850-2000. Conservation Biology. Vol. 16, No. 4, pp: 1123-1136.
37
McLoughlin, P.D. and Ferguson, S.H., 2000. A hierarchical sequence of limiting factors may help explain variation in home range size. Ecoscience. Vol. 7, No. 2, pp: 123-130.
38
McLoughlin,P.D.;Ferguson,S.H. and Messier, F.O., 2000. Intraspecific variation in home range overlap with habitat quality: a comparison among brown bear populations. Evolutionary Ecology. Vol. 14, No. 1, pp: 39-60.
39
Nawaz, M.A., 2008. Ecology, Genetics and Conservation of Himalayan Brown Bears. Department of Ecology and Natural Resource Management, Norwegian University of Life Sciences. Norway. (PhD Thesis).
40
Nawaz, M.A.; Martin, J. and Swenson, J.E., 2014. Identifying key habitats to conserve the threatened brown bear in the Himalaya. Biological Conservation. Vol. 170, pp: 198-206.
41
Nezami, B. and Farhadinia, M.S., 2011. Litter Size of Syrian Brown Bear (Ursus arctos syriacus) in Central Alborz Protected Area, Iran. Ursus. Vol. 28, No. 2, pp: 167-171.
42
Nielsen, S.E.; Stenhouse, G.B. and Boyce; M.S., 2006. A habitat based framework for grizzly bear conservation in Alberta. Biological conservation. Vol. 130, No. 2, pp: 217-229.
43
Phillips, S.J.; Dudik, M.; Elith, J.; Graham, C.; Lehmann, A.; Leathwick, J. and Ferrier, S., 2009. Sample selection bias and presence only models of species distributions. Ecological Application. Vol. 19, No. 1, pp: 181-97.
44
Phillips, S.J.; Dud´ık, M. and Schapire, R.E., 2004. A maximum entropy approach to species distribution modeling. In: Proceedings of the 21st International Conference on Machine Learning, ACMPress, New York. pp: 655-662.
45
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecolgical Modelling. Vol. 190, pp: 231-259.
46
Phillips, S.J. and Dudík, M., 2008. Modeling of species distributions with Maxent: new extensions and a comprehensive evaluation. Ecography. Vol. 31, pp: 161-175.
47
Servheen, C., 1990. The status & conservation of the bears of the world. InternationalConference on BearResearch & Management Monograph Series. Vol. 2, 32 p.
48
Trisurat, Y.; Bhumpakphan, N.; Reed, D.H. and Kanchanasaka, B.,2012. Using species distribution modeling to set management priorities for mammals in northern Thailand. Natural Conservation. Vol. 20, pp: 264-273.
49
Warren, D.L. and Seifert, S.N., 2011. Ecological niche modeling in Maxent: the importance ofmodel complexity and the performance of model selection criteria. Ecological Applications. Vol. 21, No. 2, pp: 335-342.
50
Weber, W. and Rabinowitz, A., 1996. A Global Perspective on Large Carnivore Conservation. Conservation Biology. Vol. 10, No. 4, pp: 1046-1054.
51
Woodroffe, R., 2000. Predators and people: using human densities to interpret declines of large carnivores. Animal Conservation. Vol. 3, No. 2, pp: 165-173.
52
ORIGINAL_ARTICLE
کمیسازی تغییرات زیستگاهی آهوی ایرانی (Gazella subgutturosa) در پناهگاه حیات وحش شیراحمد سبزوار با استفاده از متریکهای اکولوژی سیمای سرزمین
امروزه طبیعت بکر و زیستگاههای دور افتاده و دور از تاثیرات بشر، بسیار کمیاب گردیده است. احداث مناطق حفاظت شده تلاش آگاهانهای برای حمایت از آخرین بازمانده تنوع زیستی است که کم و بیش در روند توسعه ناپایدار کنونی ویژگیهای طبیعی خود را حفظ کردهاند. ظرفیت دانش اکولوژی سیمای سرزمین برای دنبال کردن فرایندهای اکولوژیکی از درون طیف وسیعی از مقیاس های فضایی- زمانی و توجه به تاثیرات فرهنگی این امکان را فراهم میکند که اثرات واقعی فعالیتهای انسانی و برنامهریزی های مرتبط با آنها را درک نماییم. در پژوهش حاضر، تغییرات سیمای سرزمین در دوره 10 ساله از سال 2006 تا سال 2016 در پناهگاه حیات وحش شیراحمد سبزوار با هدف مطالعه تاثیرات آن بر زیستگاه آهوی ایرانی مورد مطالعه قرار گرفت. به این منظور، پس از تهیه و پردازش تصاویر ماهوارهای مناسب از منطقه مورد مطالعه، نقشههای پوشش اراضی این منطقه برای دوره زمانی مذکور استخراج گردید. سپس جهت کمیسازی تغییرات زیستگاهی آهو در دوره 10 ساله، متریکهای سیمای سرزمین در سطح طبقه استخراج و محاسبه شدند. نتایج محاسبه متریکها بیانگر افزایش مساحت و پیوستگی در طبقه جنگل تاغ و گز و کاهش مساحت، بروز از هم گسیختگی و تغییر شکل و اندازه لکهها در سه طبقه مرتع، شورهزار و زراعت میباشد که ناشی از وجود تعداد زیاد روستا در اطراف منطقه، فعالیتهای انسانی مانند چرای بیرویه دام و خشکسالی است.
http://www.aejournal.ir/article_74136_4a6a5437e6d17de09cd821c023d2d9d1.pdf
2018-09-23
9
16
تغییرات زیستگاهی
آهوی ایرانی
پناهگاه حیات وحش شیراحمد سبزوار
رهیافت اکولوژی سیمای سرزمین
علی
رازقندی
razghandiali@yahoo.com
1
دانشکده محیط زیست، پردیس فنی، دانشگاه تهران
AUTHOR
لعبت
زبردست
lzebardast@ut.ac.ir
2
دانشکده محیط زیست، پردیس فنی، دانشگاه تهران
LEAD_AUTHOR
حمید رضا
جعفری
hjafari@ut.ac.ir
3
دانشکده محیط زیست، پردیس فنی، دانشگاه تهران
AUTHOR
احمد رضا
یاوری
ayavari@ut.ac.ir
4
دانشکده محیط زیست، پردیس فنی، دانشگاه تهران
AUTHOR
اداره کل حفاظت محیط زیست خراسان رضوی. 1396. سرشماری سالانه حیات وحش خراسان رضوی. اداره کل حفاظت محیط زیست خراسان رضوی.
1
اردکانی، م.ر.، 1392. اکولوژی (چاپ پانزدهم). انتشارات دانشگاه تهران. تهران. 340 صفحه.
2
رام، م.؛ فرحمند، ح.؛ کرمی، م. و ایمانی هرسینی، ج.، 1396. ساختار جمعیتی و جایگاه تبارشناسی آهوکوهی (Gazzella gazelle) در منطقه حفاظت شده فارور با استفاده از DNA میتوکندری. محیط زیست جانوری. دوره 9، شماره 2، صفحات 1 تا 8.
3
زبردست، ل. و جعفری، ح.ر.، 1390. ارزیابی روند تغییرات تالاب انزلی با استفاده از سنجش از دور و ارائة راه حل مدیریتی. مجله محیط شناسی. دوره 37، شماره 57، صفحات 57 تا 64.
4
زمانی، ص.؛ عرفانی رحمت نیا، ع. و ابویسانی، ر.، 1390. ارزیابی قابلیتها و تنگناهای پناهگاه حیات وحش شیراحمد سبزوار به لحاظ اکوتوریسم با استفاده از قابلیتهای نرم افزار GIS. همایش گردشگری و توسعه پایدار. دانشگاه آزاد اسلامی واحد همدان.
5
کاظمی جهندیزی، ا.؛ کابلی، م.؛ کرمی، م. و صوفی، م.، 1394. تعیین ظرفیت برد زیستگاه و رژیم غذایی آهوایرانی (Gazellasubgutturosa) در پارک ملی سرخه حصارتهران. علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 17، شماره 1، صفحات 135 تا 143.
6
کرمی، پ.؛ کمانگر، م. و حسینی، س.م.، 1395. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه آهوایرانی( Gazella subgutturosa subgutturosa) در منطقه شکارممنوع قراویز و استان کرمانشاه با استفاده از شبکه عصبی مصنوعی. پژوهش های جانوری. دوره 29، شماره 3، صفحات 340 تا 352.
7
ماهینی، ع. و کامیاب، ع.، 1388. سنجش از دور و سامانههای اطلاعات جغرافیایی کاربردی با نرمافزار ایدریسی. انتشارات مهر مهدیس. تهران. 610 صفحه.
8
محرمنژاد، ن.، 1392. مدیریت و برنامهریزی محیط زیست (چاپ اول). نشر دینگار. تهران. 400 صفحه.
9
مخدوم، م.؛ درویشصفت، ع.ا.؛ جعفرزاده، ه. و مخدوم، ع.، 1386. ارزیابی و برنامهریزی محیط زیست با سامانههای اطلاعات جغرافیایی. انتشارات دانشگاه تهران. تهران. 304 صفحه.
10
ملکی نجفآبادی، س.؛ سفیانیان، ع. و راهداری، و.، 1389. بررسی تغییرات بومشناسی منظر در پناهگاه حیات وحش موته با استفاده از سامانههای اطلاعات جغرافیایی (GIS). محیط زیست طبیعی. دوره 63، شماره 4، صفحات 373 تا 387.
11
Antrop, M., 2000. Background concepts for integrated landscape analysis. Agriculture, Ecosystems & Environment. Vol. 77, pp: 17-28.
12
Coppin, P.; Jonckheere, I.; Nackaerts, K.; Muys, B. and Lambin, E., 2004. Digital change detection methods in ecosystem monitoring: a review. Remote Sensing. Vol. 25. No. 9. pp: 1565-1596.
13
Erickson, S.L. and King, B.J., 1999. Fundamentals of Environmental Management. John Wiley & Sons inc. USA.352 p.
14
Farina, A., 2009. Ecology, Cognition & Landscape; Linking Natural and Social System. Springer, NewYork. 161 p.
15
Forman, R.T., 1995. Land Mosaics: The Ecology of Landscapes and Regions. Cambridge: Cambridge University Press. 632 p.
16
Herzog, F.; Lausch,A.; Müller,E.; Thulke,H.; Steinhardt, U. and Lehmann, S., 2001. Landscape metrics for the assessment of landscape destruction and rehabilitation. Environmental Management. Vol. 27, No. 1, pp: 91-107.
17
Jowkar,H.;Ostrowski,S.;Tahbaz, M.andZahler,P., 2016. The Conservation of Biodiversity in Iran: Threats, Challenges and Hopes. Iranian Studies. Vol. 49, No. 6, pp. 1065-1077.
18
Leitao, A.B. and Ahern, J., 2002. Applying Landscape Ecological Concepts and Metrics in Sustainable Landscape Planning. Landscape & Urban Planninig. Vol. 59, pp: 65-93.
19
Mallon, D.P., 2008. Gazella subgutturosa. The IUCN Red List of Threatened Species 2008. e. T8976A12945246. http:// dx.doi.org/10.2305/IUCN.UK.2008.RLTS.T8976A129452.en. s.l.: IUCN.
20
Margules, C.R. and Pressy, R.L., 2000. Systematic conservation planning. Nature. Vol. 405, pp: 243-253.
21
Mc Neely, J.A., 1994. Protected Area in the Modern World. Protecting Nature, Regional Reviews of Protected Area. IUCN/IV World Congress.
22
Oldfield, T.E.E.; Smith, R.J.; Harrop, S.R. and Leader, W.N., 2004. A gap analysis of terrestrial protected areas in England and its implications for conservation policy. Biological Conservation. Vol. 120, pp: 303-309.
23
Salem, B.B., 2003. Application of GIS to biodiversity monitoring. J of arid environments. Vol. 54, pp: 91-114.
24
Tso, B. and Mather, P.M., 2001. Classification methods for remotely sensed data. Taylor and Francis. New York. 356 p.
25
ORIGINAL_ARTICLE
مدل سازی توزیع کل و بز وحشی (1777, Capra aegagrus Erxleben) در منطقه حفاظت شده و پناهگاه حیات وحش بیستون کرمانشاه با مدل های مبتنی بر داده های حضور
هدف این مطالعه تعیین مهم ترین عوامل موثر بر حضور کل و بز با استفاده از روش های مبتنی بر داده های حضور در فصل های بهار و پاییز ۱۳۹۵ بوده و از ۱۳ متغیر محیط زیستی استفاده شده است. با جمع آوری داده های میدانی و مقایسه ویژگی های اکولوژِیک ۱۱۰ نقطه حضور در منطقه حفاظت شده و پناهگاه حیات وحش بیستون، مدل توزیع بالقوه گونه و مهم ترین متغیرهای دخیل در استفاده از زیستگاه به دست آمد. نتایج نرم افزارها نشانگر مطلوبیت زیستگاه کل و بز در نواحی جنوب و غرب منطقه است. مهم ترین متغیرهای موثر بر مطلوبیت زیستگاه در نرم افزار تحلیل آشیان بوم شناختی فاصله از مراکز صنعتی در فصل بهار و فاصله از مراکز نظامی در فصل پاییز بوده است. در فصل پاییز متغیرهای فاصله از روستاها، مراکز نظامی و شیبو در فصل بهار ارتفاع از سطح دریا بیش ترین میزان مشارکت را داشته اند. در فراکافت جک نایف فاصله از عشایر و تیپ پوشش گیاهی بیش ترین اثر را در فصول بهار و پاییز بر مطلوبیت زیستگاه داشته اند. میزان حاشیه گرایی 1/8 در پاییز و 0/9 در بهار نشانگر تخصص گرا بودن و توان تحمل محیطی کم گونه است. جهت بهینه سازی مدل از اعتبار سنجی متقاطع استفاده شد. در نرم افزار ModEco، بهترین عملکرد را مدل Domain با دقت 0/9265 داشته است. نتایج روش ها مشابه بود و بیش ترین تفاوت را ENFA با سایر روش ها (MaxEnt,Domain,Bioclim و Svm) داشت. اما بهترین عملکرد را MaxEnt با 0/931 = AUC داشت.
http://www.aejournal.ir/article_75265_d78e730791f0af321594406a10b4e74b.pdf
2018-09-23
17
28
کل و بز
حداکثر آنتروپی
تحلیل فاکتور آشیان بوم شناختی
موداکو
سامانه اطلاعات جغرافیایی
منطقه حفاظت شده بیستون
پناهگاه حیات وحش بیستون
فرزانه
ایمانی بوژانی
farzanehimani18@gmail.com
1
گروه زیستگاه ها و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست و انرژی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
مرتضی
نادری
ghnadery@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه اراک، کد پستی: ۸۳۴۹-۳۸۱۵۶
AUTHOR
جلیل
ایمانی هرسینی
imanijalil@yahoo.com
3
گروه زیستگاه ها و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست و انرژی، واحد علوم و تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
بهمن
شمس اسفند اباد
bshams1357@gmail.com
4
گروه محیط زیست، واحد اراک، دانشگاه آزاد اسلامی، اراک، ایران
AUTHOR
افتخاری،ع.ر.؛فرحپور، م.؛ارزانی،ح. و عبداللهی،ج.، 1388. بررسی و مقایسه گونهای مورد چرای دام اهلی (گوسفند و بز) وحشی (آهو) درمراتع استپی منطقه پشتکوه استان یزد. علوم و فنون کشاوری و منابع طبیعی. سال 13، شماره 47، صفحات 367 تا 379.
1
امیدی،م.، ۱۳۸۷ .تجزیه و تحلیل و مدلسازی زیستگاه پلنگ ایرانی در پارک ملی کلاه قاضی استان اصفهان. پایاننامه کارشناسیارشد. دانشکده محیط زیست و انرژی دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران. ۹۵ صفحه.
2
جمالیمنش،ا.؛عموئیان،ا.؛خسروی، ر. و رادنژاد،ه.، 1393. مدل سازی مطلوبیت زیستگاه آهوی ایرانی با روش حداکثر آنتروپی در پارک ملی بمو(استان فارس). کنفرانس بینالمللی توسعه پایدار، راهکارها و چالشها با محوریت کشاورزی، منابع طبیعی، محیط زیست و گردشگری، تبریز، دبیرخانه دائمی کنفرانس بینالمللی توسعه پایدار، راهکارها وچالشها.
3
حسینی،س.م.؛ریاضی،ب. و شمساسفندآباد،ب.،۱۳۹۱. ارزیابی مطلوبیت زیستگاه کل و بز (Capra aegagrus)در استان گلستان. محیط زیست جانوری. سال 9، شماره ۲، صفحات 9 تا 16.
4
خاکی،س.؛کابلی،م.؛علیزاده،ا. ونوری،ز.، ۱۳۹۱. بررسی پارامترهای موثر در پراکندگی پازن در منطقه حفاظت شده لشگر در استان همدان. محیط زیست جانوری. سال 4، شماره 1، صفحات 1 تا 8.
5
رنجبر،ن.؛همامی،م.ر.؛ترکش، م. وژوزف، س.، ۱۳۹۳. ارزیابی مطلوبیت زیستگاه بز وحشی در پارک ملی کلاه قاضی. پایان نامه کارشناسیارشد. دانشگاه صنعتی اصفهان. دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی.
6
سرهنگزاده،ج.؛یاوری،ا.؛همامی،م.؛جعفری،ح.وشمس اسفندآباد،ب.، 1390.مدلسازی مطلوبیت زیستگاه گونههای حیات وحش در مناطق خشک (مطالعه موردی کل و بزCapra aegagrus) در منطقه حفاظت شده کوه بافق. فصلنامه خشک بوم. دوره 1، شماره 3، صفحات 38 تا 50.
7
شمساسفندآباد،ب.؛سرهنگزاده، ج.؛یاوری، ا.؛همامی، م. و جعفری، ح.، 1392. مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش با استفاده از رویکرد تحلیل عامل آشیان بومشناختی در منطقه حفاظت شده کوه بافق. پژوهشهای محیط زیست .سال 8، شماره 4، صفحات 169 تا 182.
8
شیرزاد،م.؛ریاضی،ب.وتوکلی،م.، ۱۳۹۱. تهیه نقشه مطلوبیت زیستگاههای گونه پازن در پارک ملی خجیر. محیط زیست جانوری. سال 4، شماره 4، صفحات 9 تا 16.
9
صادقیروش،م.ح. و خراسانی،ن.، 1388. بررسی آثار گرد و غبار ناشی از صنایع سیمان برتنوع و تراکم پوشش گیاهی مطالعه موردی: کارخانه سیمان آبیک. علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 10، شماره 1، صفحات 43 تا 59.
10
ضیایی،ه.،۱۳۸۷. راهنمای صحرایی پستانداران ایران. انتشارات کانون آشنایی با حیات وحش. ۱۹۱ صفحه.
11
فراشی،آ.؛کابلی،م. ومومنی،ا.، ۱۳۸۱. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه بز و پازن (Capraaegagrus)به کمک روش تحلیل فاکتوری آشیان بومشناختی (ENFA) در پارک ملی کلاه قاضی، استان اصفهان. محیط زیست طبیعی دانشگاه تهران (منابع طبیعی ایران). دوره ۶، شماره 1، صفحات 33 تا 36.
12
فراشی،آ.، ۱۳۹۳. مروری بر مدلسازی زیستگاه بهعنوان ابزاری برای مدیریت زیستگاههای حیاتوحش .زیستشناسی جانوری تجربی. دوره 3، شماره3 ، صفحات ۴۳ تا ۵۳.
13
مددی،م.،1392.مدلسازی مطلوبیت زیستگاه کل و بز بهکمک روش تحلیل عاملی آشیان بومشناختی در پارک ملی گلستان. پایان نامه کارشناسیارشد. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. دانشکده مرتع و آبخیزداری و شیلات و محیط زیست.
14
مصطفوی،س.م.؛علیزاده، ا.؛کابلی،م.؛ کرمی،م.؛محمدی،س. گلجانی،ر.، 1389. تهیه نقشه مطلوبیت زیستگاههای بهاره و تابستانه گونه پازن در پارک ملی لار. علوم و فنون منابع طبیعی. سال 5، شماره 2، صفحات 78 تا 94.
15
ملکینجفآبادی، م.، 1389. بررسی تغییرات بومشناسی منظر در پناهگاه حیاتوحش موته با استفاده از سامانههای اطلاعات جغرافیایی. مجله محیط زیست طبیعی. دوره ۶۳، شماره ۴، صفحات 373-383.
16
Bedia, J.; Busque, J. and Gutierrez, J.M., 2011. Predicting plant species distribution across an alpine rangeland in northern Spain. a comparison of probabilistic methods. Journal of Vegetation Science. Vol. 14, pp: 415-432.
17
Cleo, B.F.; Gloria, M.L. and Courchamp, F.‚ 2013. The impact of climate change changes over time. Biological Conservation. Vol. 167, pp: 107-115.
18
DeStefano, S.; Schmidt, S.L. and deVosjr, J.D., 2000. Observations of predator activity at wildlife water developments in southern Arizona. Range Management. Vol. 53, pp: 255-258.
19
Drake, J.M.; Randin, C. and Guisan, A., 2006. Modelling ecological niches with support vector machines. Journal of Applied Ecology. Vol. 43, pp: 424-432.
20
Favaro, L.; Tirelli, T. and Pessani, D., 2011. Modelling habitat requirements of white clawed crayfish (Austropotamobius pallipes) using support vector machines. Knowledge and Management of Aquatic Ecosystems.
21
Vol. 401, pp: 1-14.
22
Gibson‚L.A.; Wilson‚ B.A.; Cahill‚ D.M. and Hill, j., 2003. Modelling Habitate suitability of the swamp Antechinus (Antechinus minimus maritimus) in the costal heathlands of southern victoria‚Austuralia.International jornal of biological conservation. Vol. 117, pp: 143-150.
23
Glenz, C.; Massolo, A.;Kuonen, D. and Schlaepfer, R., 2001. Wolf habitat suitability prediction study in Valais (Switzerland). Journal of Landscape and Urban Planning. Vol. 55, pp: 55-65.
24
Guisan, A. and Zimmermann, N.E., 2000. Predictive habitat distribution models in ecology. Ecological Modelling. Vol. 135, pp: 147-186.
25
Helen, M.P.; Barry, C.; Pam, L.F. and David, B.‚ 2012. Ensemble forecasting of potential habitat for three invasive fishes. Aquatic Invasions. Vol. 7, No. 1, pp: 59-72.
26
Hirzel, A.H.; Helfer, V. and Metral, F. 2011. Assessing habitat-suitability models with a virtual species. Ecological Modelling. Vol. 145, pp: 111-121.
27
Hirzel, A.; Hausser, J.; Chessel, D. and Perrin, N., 2002. Ecological-niche factor analysis: how to compute habitat suitability maps without absence data. Ecology. Vol. 83, pp: 2027-2036.
28
Lorena AC.; De Siqueira, MF.; De Giovanni, R.; Carvalho, A.C.L.F. and Prati, R., 2008. Potential Distribution Modelling Using Machine Learning. Proceedings of the 21st international conference on Industrial, Engineering and other Applications of Applied Intelligent Systems: New Frontiers in Applied Artificial Intelligence. Vol. 5027, pp: 255-264.
29
Luoto, M.; Heikkinen, R.K.; Poyry, J. and Saarinen, K., 2006. Determinants of the biogeographical distribution of butterflies in boreal regions. Journal of Biogeography. Vol. 33, pp: 1764-1778.
30
Mariwan, R. 2015. Influence of environmental variables on distribution of wild Goat (capra aegagrus). American scientific reaserch jornal for engineering‚Technology and sciences. Vol. 18‚No. 1.
31
Martinez, I.; Carreno, F.; Escudero, A. and Rubio, A., 2006. Are threatened lichen species well protected in spain? Effevtivnes of a protected area network. Biological Conservation. Vol. 133, pp: 500-511.
32
Morrison‚ M.L.; Marco‚ B.G. and Mannan‚ R.W.‚ 1992. Wildlife habitat relationships: Cocepts and applications. University of Wisconsin Press‚ Madison‚ Wisconsin‚ USA. 147 p.
33
O’Brien, C.S.; Waddell, R.B.; Rosenstock, S.S. and Rabe, M.J., 2006. Wildlife use of water catchments in southwestern Arizona. The Journal of Wildlife Society Bulletin. Vol. 34, pp: 582-591.
34
Pearson, R.G., 2007. Species’ distribution modeling for conservation educators and practitioners. American Museum of Natural History. pp: 1-50.
35
Phillips, S.J.; Anderson, R.P. and Schapire, R.E., 2006. Maximum entropy modeling of species geographic distributions. Ecological Modelling. Vol. 190, pp: 231-259.
36
Rosenstock, S.S.; Ballard, W.B. and Devos, J.C., 1999. Viewpoint: benefits and impacts of wildlife water developments. Range Manga. Vol. 52, pp: 302-311.
37
Sanchooli‚ N., 2016. Ecological Niche Divergence between Two Subspecies of Large-scaled Agama, Laudakia nupta (De Filippi, 1843) (Sauria: Agamidae), in Iran. ACTA Zoologica bulgaric abulg. Vol. 68, No. 3, pp: 351-354.
38
Shams Esfandabad, B.; Karami, M.; Hemami, M.R.; Riazi, B. and Sadough, M.B., 2010. Habitat associations of wild goat in central Iran: Implications for conservation. European J. Wildlife Res. Vol. 56, No. 6, pp.883-894.
39
Tua, C.H.; Lob, N.J.; Changc, W.I. and Huangd, K.Y., 2012. Evaluating The Novel Methods On Species Distribution Modeling in Complex Forest. International Archives of the Photogrammetry. Remote Sensing and Spatial Information Sciences. XXII ISPRS Congress, Melbourne, Australia.
40
Weinberg‚ P.; Jdeidi‚ T.; Massei‚ M.; Nader‚ I.; desmet‚ K. and Cuzin‚ F.‚ 2013. Capra aegagrus: IUCN 2013‚IUCN Red list of threatened species. version 2013.1. Internet: www.iucnredlist.org‚ [Download on 05 April 2016].
41
Zaniewski, A.E.; Lehmann, A. and Overton, J.M., 2002. Predicting species spatial distributions using presence only data: a case study of native New Zealand ferns. Ecological Modelling. Vol. 157, pp: 261-280.
42
ORIGINAL_ARTICLE
مدل سازی مطلوبیت زیستگاه کل و بز (Capra aegagrus) در پارک ملی قمیشلو با استفاده از شبکه عصبی مصنوعی
مدلهای پراکنش گونهای رابطه بین توزیع گونهها و عوامل محیطی را ارزیابی میکنند و درک بهتری از مدیریت و سیاستهای آینده ارائه میدهند. یکی از این ابزارهای مدل سازی، شبکه عصبی مصنوعی میباشد که امروزه به ابزار مهمی برای تصمیم گیری تبدیل شده است. بر اساس اعلام اتحادیه جهانی حفاظت از حیات وحش و منابع طبیعی از میان گونههای مهره داران در ایران، کل و بز جزء طبقه گونههای آسیب پذیر میباشد. از اینرو هدف از این مطالعه مدل سازی مطلوبیت زیستگاه گونه کل و بز در پارک ملی قمیشلو با استفاده از شبکه عصبی مصنوعی میباشد. در این مطالعه از متغیرهای ارتفاع، شیب، پوشش گیاهی، فاصله از جاده و فاصله از منابع آبی استفاده شد. به منظور تجزیه و تحلیل داده ها از شبکه پرسپترون چند لایه، و به منظور محاسبات از نرم افزار MATLAB R2015b استفاده شد. نتایج حاصل از مدل سازی نشان داد که به ترتیب متغیرهای ارتفاع، فاصله از منابع آب، شیب، فاصله از جاده و طبقه پوشش گیاهی مهم ترین عوامل موثر بر پراکنش گونه کل و بز می باشد. محدوده مطلوب پراکنش گونه کل و بز در پارک ملی قمیشلو در مناطق با ارتفاع بیش تر از 2200 متر می باشد که مساحت مناطق مطلوب برای زیستگاه این گونه در حدود 3982 هکتار از کل مساحت منطقه می باشد که 12/36 درصد از منطقه را شامل می شود.
http://www.aejournal.ir/article_76945_5c7a5ec354b1f1737493162aec20162a.pdf
2018-09-23
29
38
مدل سازی مطلوبیت زیستگاه
کل و بز
شبکه عصبی مصنوعی
ANN
محمدرضا
احمدی دستجردی
mohammad.rahmadi@yahoo.com
1
گروه طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، سازمان حفاظت محیط زیست، کرج، صندوق پستی: 118-31746
AUTHOR
علی
جهانی
ajahani@ut.ac.ir
2
گروه طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، سازمان حفاظت محیط زیست، کرج، صندوق پستی: 118-31746
LEAD_AUTHOR
حمیدرضا
رضایی
rezaei@gau.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
حمید
گشتاسب
meigooni1959@gmail.com
4
گروه طبیعی و تنوع زیستی، دانشکده محیط زیست، سازمان حفاظت محیط زیست، کرج، صندوق پستی: 118-31746
AUTHOR
انصاری، ا.؛ کرمی، م.؛ رضایی، ح. و ریاضی، ب.، 1393. اثرات توسعه بر زیست بوم پازن در استان مرکزی و ارائه راهکارها. همایش ملی زیستبوم و توسعه. استان مرکزی، اراک.
1
جهانی، ع.، 1395. مدلسازی آشفتگی انبوهی جنگل در ارزیابی محیطی با استفاده از شبکه عصبی مصنوعی. فصلنامه تحقیقات جنگل و صنوبر ایران. جلد 24 شماره 2، صفحات 310 تا 322.
2
حسینی، م.؛ ریاضی، ب.؛ شمساسفندآباد، ب. و نادری، م.، 1396. ارزیابی زیستگاه کل و بز (Capra aegagrus) در استان گلستان. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 2، صفحات 9 تا 16.
3
حسینی، م.؛ فراشی، آ.؛ فرهادینیا، م.ص. و خانی، ع.، 1396. مدلسازی زیستگاه گونه کل و بز (Capra aegagrus) با استفاده از روش ماکزیمم آنتروپی در شرق ایران. اولین همایش بینالمللی پژوهش و پیشرفت در علوم زمین.
4
رضایی، ع.؛ مهدوی، م.؛ لوکس، ک.؛ فیضنیا، س. و مهدیان، م.ح.، 1386. مدلسازی منطقهای دبیهای اوج در زیرحوزههای آبخیز سد سفیدرود با استفاده از شبکه عصبی مصنوعی. نشریه علوم آب و خاک (علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی). سال 11، شماره 1، صفحات 25 تا 39.
5
رنجبر، ن.؛ همامی، م.ر.؛ ترکش، م. و شاهقلیان، ج.، 1395. ارزیابی فصلی مطلوبیت زیستگاه بز وحشی (Capra aegagrus) در مناطق کوهستانی پارک ملی کلاه قاضی بهروش حداکثر آنتروپی. بومشناسی کاربردی. سال 5، شماره 16. صفحات 23 تا 36.
6
فراشی، آ.؛ کابلی، م. و مومنی، ا.، 1389. مدلسازی مطلوبیت زیستگاه بز و پاژن (Capra aegagrus) بهکمک روش تحلیل عاملی آشیان بومشناختی (ENFA) در پارک ملی کلاه قاضی، استان اصفهان. نشریه محیط زیست طبیعی، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 63، شماره 1، صفحات 63 تا 73.
7
فرهمند، م.، 1380. بررسی عوامل موثر در توزیع زوج سمان در پارک ملی کلاه قاضی. پایاننامه کارشناسیارشد، دانشگاه تهران. 120 صفحه.
8
گزارشهای طرح مدیریت قمیشلو. 1392. سازمان حفاظت محیط زیست.
9
گنجعلی، س.؛ حاجیزاده، ا.؛ قاسمی، ح.؛ حسینیقمی، م.؛ غنیپور، م. وبهزادیان، ش.، 1394. بررسی تغییرات تراکم جمعیت کل و بز (Capra aegagrus) در سه حوزه سرشماری منطقه حفاظت شده ارسباران. مجله محیطزیست جانوری. دوره 7، شماره 3، صفحات 21 تا 28.
10
وارستهمرادی،ح.وسلمان ماهینی،ع.،1390 .ارزیابی زیستگاه حیاتوحش. ترجمه جلد اول، چاپ اول، انتشارات آیینهنما. صفحات 2 تا 16.
11
Acevedo, P.; Cassinello, J.; Hortal, J. and Gortázar, C., 2007. Invasive exotic aoudad (Ammotragus lervia) as a major threat to native Iberian ibex (Capra pyrenaica): a habitat suitability model approach. Diversity & Distributions. Vol. 13, No. 5, pp: 587-597.
12
Alados, C.L. and Escos, J., 1988. Parturition dates and mother-kid behavior in Spanish ibex (Capra pyrenaica) in Spain. Journal of mammalogy. Vol. 69, No. 1, pp: 172-175.
13
Anderson, M.C.; Watts, J.M.; Freilich, J.E.; Yool, S.R.; Wakefield, G.I.; Mccaulery, J.F. and Fahnestock,
14
A., 2000. Regression-tree modeling of desert tortoise habitat in the centeral Mojave Desert. Ecological application. Vol. 10, pp: 890-897.
15
Bangs, P.D.; Krausman, P.R.; Kunkel, K.E. and Parsons, Z.D., 2005. Habitat use by female desert bighorn sheep in the Fra Cristobal Mountains, New Mexico, USA. European Journal of Wildlife Research. Vol. 51, No. 2, pp: 77-83.
16
Elith, J.; Leathwick, J.R. and Hastie, T., 2008. A working guide to boosted regression trees. Journal of Animal Ecology. Vol. 77, No. 4, pp: 802-813.
17
Gross, J.E.; Kneeland, M.C.; Reed, D.F. Reich, R.M., 2002. GISBased Habitat Models for Mountain Goats. Journal of Mammalogy. Vol. 83, No. 1, pp: 218-228.
18
IUCN. 2017. IUCN red list of threatened species, from: www.iucnredlist.org.
19
Jahani, A.; Feghhi, J.; Makhdoum, M.F. and Omid, M., 2016. Optimized forest degradation model (OFDM): an environmental decision support system for environmental impact assessment using an artificial neural network. Journal of Environmental Planning and Management. Vol. 59, No. 2, pp: 222-244.
20
Liu, C.; Berry, P.M.; Dawson, T.P. and Pearson, R.G., 2005. Selecting thresholds of occurrence in the prediction of species distribution. Ecography. Vol. 28, pp: 385-393.
21
Mahmoudabadi, A. and Seyedhosseini, S.M., 2012. Time risk tradeoff of hazmat routing problem in emergency situation. In Proceedings of the 2012 International Conference on Industrial Engineering and Operations Management, Istanbul, Turkey. pp: 344-351.
22
Maleki, S., 2007. Study habitat factors wild sheep (Ovis orientalis isfahanica) in refuge moteh by GIS. MS.C thesis. Tehran University. 120 p.
23
McShea, W.J.; Underwood, H.B. and Rappole, J.H., 1997. The science of overabundance: deer ecology and population management. Washington, DC. Smithsonian Institution Press. 402 p.
24
Morovati, M.; Karami, M. and Kaboli, M., 2014. Desirable areas and effective environmental factors of wild goat habitat (Capra aegagrus). International Journal of Environmental Research. Vol. 8, No. 4, pp: 1031-1040.
25
Morrison, M.L.; Marcot, B.G. and Mannan, R.W., 1992. Wildlife-habitat relationships: Concepts and applications. University of Wisconsin Press, Madison, Wisconsin, USA.
26
Naderi, G.; Riazi, B.; Aref, N.; Khalatbrari, M.; Mohammadi, S.; Lahoot, M. and Kamran, M., 2013. Habitat preferences of Bezoar wild goats (Capra aegagrus) in Agh-Dagh protected area, Iran. North-western Journal of Zoology. Vol. 9, No. 1, pp: 99-102.
27
Rushton, S.P.; Ormerod, S.J. and Kerby, G., 2004. New paradigms for modelling species distributions? Journal of applied ecology. Vol. 41, No. 2, pp: 193-200.
28
Salas, E.A.L.; Seamster, V.A.; Boykin, K.G.; Harings, N.M. and Dixon, K.W., 2017. Modeling the impacts of climate change on Species of Concern (birds) in South Central US based on bioclimatic variables. AIMS Environ. Sci. Vol. 4, pp: 358-385.
29
Saltelli, A.; Ratto, M.; Andres, T.; Campolongo, F.; Cariboni, J.; Gatelli, D.; Saisana, M. and Tarantola,
30
S., 2008. Global sensitivity analysis: the primer. John Wiley and Sons.
31
Shams, B.; Hemami, M.; Karami, M. and Riazi, B., 2010. Habitat associations of wild goat in central Iran: implications for conservation. European Journal of Wildlife Research. Vol. 55, No. 6, pp: 883-849.
32
Ziaie, H., 2008. A field guide to mammals of Iran, 2nd edn. Wildlife Center Publication, Iran.
33
ORIGINAL_ARTICLE
مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش (Ovis orientalis) و ارتباط آن با پراکنش پوشش گیاهی در فصل پاییز در منطقه شکار ممنوع کاوه ده
منطقه تنگه آخوری در شهرستان فیروزکوه از توابع استان تهران قرار دارد. این مطالعه به منظور بررسی مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش و ارتباط آن با پراکنش پوشش گیاهی منطقه شکار ممنوع کاوه ده، در فصل پاییز1393 برای شناسایی گونه های گیاهی و نمونه برداری به روش پلات گذاری انجام شد و برای شاخص های تنوع زیستی گیاهان با استفاده از نرم افزار Past انجام شده است. مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش با استفاده از رتبه دهی به متغیرهای زیستگاهی (روشHEP) و مدل HSI تعیین شد. 9 متغیر زیستگاهی بررسی شده شامل: پوشش گیاهی، جهت، شیب، فاصله از جاده، فاصله از سکونتگاهها، فاصله از زمینهای کشاورزی وغیره بودند. در مهرماه، 11 گونه گیاهی، آبان 9 گونه گیاهی و آذرماه نیز 9 گونه گیاهی شناسایی شد. شاخص تنوع شانون وینر در سه ماه در فصل پائیز به ترتیب 2/013، 882، 1/2، غنای گونه ای مارگالف به ترتیب 2/153، 1/954، 2/288، غنای گونه ای منهینک به ترتیب 1/079، 1/162، 1/567 و تنوع گونهای سیمپسون 0/8232، 0/8411، 0/8154 به دست آمد. با توجه به امتیازات به دست آمده از روش HEP، مطلوبیت زیستگاه کاوه ده در فصل پاییز 1393 خوب (0/67) تعیین شد.
http://www.aejournal.ir/article_79219_ba6f05b3ac243690d870feb13bcf94ba.pdf
2018-09-23
39
46
مطلوبیت زیستگاه
قوچ و میش (Ovis orientalis)
پوشش گیاهی
منطقه شکار ممنوع کاوه ده
محیا
خسروی
mahyakhosravi@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، واحد خوراسگان، دانشگاه آزاد اسلامی، اصفهان، ایران
LEAD_AUTHOR
پهلوانی، ع.، 1383. ارزیابی زیستگاه قوچ و میش اوریال پارک ملی گلستان. محیط شناسی. دوره 30، شماره 35، صفحات 1 تا 8.
1
خاکی صحنه، س.؛ علیزاده شعبانی، ا.؛ میرسنجری، م.؛ کابلی، م.؛ نوری، ز. و فتاحی، ب.، 1390. ارزیابی زیستگاه پایکای افغانی (Ochotona rufescens) با استفاده از روش های رگرسیون منطقی دوتایی و HEP (مطالعه موردی: منطقه حفاظت شده لشگردر، همدان). مجله محیط زیست جانوری. دوره 7، شماره 1، صفحات 3 تا 10.
2
خسروی، م. و بهروزی راد، ب.، 1393. بررسی پوشش گیاهی منطقه کاوه ده فیروزکوه محدوده تنگه آخوری. دومین همایش ملی برنامه ریزی حفاظت، حمایت از محیط زیست و توسعه پایدار.
3
خسروی. م. و بهروزی راد، ب.، 1394. تعیین مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش (Ovis orientallis) در منطقه کاوه ده فیروزکوه، چهارمین همایش سراسری محیط زیست، انرژی و پدافند زیستی.
4
سلمان ماهینی، ع.، 1373. ارزیابی زیستگاه قوچ و میش در اندوختگاه زیست سپهر توران با تاکید بر کاربرد عکس های ماهواره ای. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه تهران.
5
ضیایی، ه.، 1388. راهنمای صحرایی پستانداران ایران. کانون آشنایی با حیات وحش. تهران. 419 صفحه.
6
عفتی، ن.؛ منصوری، ج.؛ دهداردرگاهی، م.و شمس اسفند آباد، ب.، 1392. ارزیابی زیستگاه بهاره قوچ و میش اوریال (Ovis orientalis arkali) در پارک ملی سالوک به روش انفا. همایش ملی پژوهش های محیط زیست ایران. 9 صفحه.
7
فلاح باقری، ف.؛ کابلی، م. وآزیتا، ف.، 1388. ارزیابی زیستگاه قوچ و میش اصفهانی(Ovis orientalis isphahanica) در پارک ملی کلاه قاضی با روشENFA . همایش و نمایشگاه ژئوماتریک.
8
اداره محیط زیست فیروزکوه. 1384. طرح جامع منطقه شکار ممنوع کاوه ده فیروزکوه. صفحات 9 تا 31.
9
کرمی، م.، 1364. روشهای بررسی پوشش گیاهی. واحد فوق برنامه بخش فرهنگی دفتر مرکزی جهاد دانشگاهی. صفحات 79 تا 82.
10
گلزار، ا.؛ جومردیانی، ب. وپورشیرزاد، ع.، 1391. ارزیابی زیستگاه بز و پازن Capra aegagrus aegagrus در منطقه حفاظت شده تنگ سولک به کمک روش .HEP اولین همایش ملی حفاظت و برنامه ریزی محیط زیست.
11
ملکی نجف آبادی، س.؛ همامی، م. و سلمان ماهینی، ع.، 1389. تعیین مطلوبیت زیستگاه قوچ و میش اصفهانی (Ovis orientalis isphahanica) در پناهگاه حیاتوحش موته با استفاده از روش تحلیل عاملی آشیان بومشناختی. محیط زیست طبیعی. دوره 63، شماره 3، صفحات 279 تا 290.
12
Ahas, R.; Aasa, A.; Menzel, A.; Fedotova, V. and Scheifinger, H., 2002. Changes in European spring phenology. International journal of climatology. Vol. 22, No. 14, pp: 1727-1738.
13
Brooks, R.P., 1997. Improving habitat suitability index models. Wildlife Society Bulletin (1973-2006). Vol. 25, No. 1, pp: 163-167.
14
Dayton, G.H. and Fitzgerald, L.A., 2006. Habitat suitability models for desert amphibians. Biological Conservation. Vol. 132, No. 1, pp: 40-49.
15
Del Barrio, G.; Alvera, B.; Puigdefabregas, J. and Diez, C., 1997. Response of high mountain landscape to topographic variables: Central Pyrenees. Landscape Ecology. Vol. 12, No. 2, pp: 95-115.
16
Dengler, J.; Löbel, S. and Dolnik, C., 2009. Species constancy depends on plot size a problem for vegetation classification and how it can be solved. Journal of Vegetation Science. Vol. 20, No. 4, pp: 754-766.
17
Guisan, A. and Zimmermann, N.E., 2000. Predictive habitat distribution models in ecology. Ecological modelling. Vol. 135, No. 2, pp: 147-186.
18
Garee, K., 2016 Himalayan ibex (Capra ibex sibirica) habitat suitability and range resource dynamics in the Central Karakorum National Park, Pakistan. Journal of King Saud University Science. Vol. 28, pp: 245-254.
19
Khalili, F.; Malekian, M.; Rojae, N. and Hemami, M.R., 2017. Habitat Evaluation of Persian Squirrel (Sqiurus anumalus) in Servak Forested Area in Kohgiluyeh & Boyer Ahmad Province. Iranian Journal of Applied Ecology. Vol. 5, No. 18, pp: 15-25.
20
Khan, G.; Khan, B.; Qamer, F.M.; Abbas, S.; Khan, A. and Xi, C., 2016. Himalayan ibex (Capra ibex sibirica) habitat suitability and range resource dynamics in the Central Karakorum National Park, Pakistan. Journal of King Saud University Science. Vol. 28, No. 3, pp: 245-254.
21
Santos, B.; Barbosa, D. and Tabarelli, M., 2007. Directional changes in plant assemblages along an altitudinal gradient in northeast Brazil. Brazilian Journal of Biology. Vol. 67, No. 4, pp: 777-779.
22
Willis, A., 1973. Introduction to plant ecology: a guide for beginners in the study of plant communities.
23
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر روش های مختلف تغذیه کمکی بر عملکرد بره های مغانی در زیستگاه بومی آن
هدف از تحقیق حاضر بررسی تاثیر روشهای مختلف تغذیه کمکی بر افزایش وزن برههای شیرخوار در شرایط مرتع بود. تعداد 90 رأس بره نر یک ماهه از یک گله عشایری انتخاب گردید و بهمدت 90 روز در فصل بهار سال 1394، در قالب یک طرح کاملاً تصادفی با 3 تیمار و 3 تکرار (10 رأس بره در هر تکرار) مورد آزمایش قرار گرفتند. سه تیمار شامل: 1- پرورش بهروش سنتی (تغذیه با شیر مادر و علوفه مرتع) به عنوان تیمار شاهد، 2- تغذیه با بلغور جو بهمیزان 266 گرم در روز بهازای هر رأس علاوه بر شیر مادر و تغذیه از مرتع (تیمار بلغور جو)، 3- تغذیه با کنسانتره بهمیزان 311 گرم در روز بهازای هر رأس علاوه بر شیر مادر و تغذیه از مرتع (تیمار کنسانتره) بودند. دوره عادتپذیری، 14 روز درنظر گرفته شد. برهها در شروع آزمایش و با فواصل 14 روزه، قبل از خوراک دهی نوبت صبح، توزین شدند. شیر مازاد بر مصرف برهها و نمره وضیعت بدنی میشهای زایمان کرده بهطور ماهانه اندازهگیری و ثبت گردید. بیشترین میزان افزایش وزن کل دوره، نمره وضیعت بدنی میشها و شیر تولیدی میش مادر در تیمار کنسانتره و کمترین آنها در تیمار شاهد مشاهده شد (0/50>p). بهطورکلی، از نظر اقتصادی استفاده از کنسانتره و بلغور جو در تغذیه برههای شیرخوار در مقایسه با روش سنتی، بهترتیب باعث افزایش 61/4 و 17/4 هزار تومان سود خالص دامدار بهازاء هر رأس گوسفند در گله مورد مطالعه شد.
http://www.aejournal.ir/article_76975_100d1336f5027218b4f6859cfd00e92c.pdf
2018-09-23
47
52
بره
تغذیه کمکی
گله عشایری
عملکرد
محمود
صحرایی
m.sahraei2009@gmail.com
1
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان اردبیل (مغان)، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اردبیل، ایران
LEAD_AUTHOR
نادر
اسدزاده
naderasadzadeh4@gmail.com
2
موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران.
AUTHOR
اکبر
ابرغانی
akbar.abargahani@gmail.com
3
بخش تحقیقات علوم دامی، مرکز تحقیقات و آموزش کشاورزی و منابع طبیعی استان اردبیل (مغان)، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اردبیل، ایران
AUTHOR
افشاریمیرک، ح.؛ کیانزاد، م.ر.؛ اسماعیلیراد، ا. ؛ زارعی، ا.؛ قنبری، ا.؛ خاطرمقدم، ع.ر.؛ گیلانی، ف.؛ موسوی، م.ن. و غروی، غ.ع.، 1376. بررسی وضیعت گلهداری در استان اردبیل. گزارش نهایی طرح تحقیقاتی. مرکز تحقیقات کشاورزی و منابع طبیعی استان اردبیل.
1
پناه، م.؛سوری، م. و وره زردی، س.، 1391. اثر جیره تکمیلی بر رشد و خصوصیات لاشه برههای شیرخوار. مجله تولیدات دامی. دوره 14 ، شماره 1، صفحات 33 تا 40.
2
خالداری، م.، 1389. اصول پرورش گوسفند و بز. انتشارات جهاد دانشگاهی دانشگاه تهران.
3
صادقیپناه، ح.، 1395. زود از شیرگیری. نشریه ترویجی، معاونت ترویج، موسسه تحقیقات علوم دامی کشور. شماره 97.
4
سعادتنوری، م. و سیاه منصور، ص.، 1390. اصول نگهداری و پرورش گوسفند. نوبت چاپ 11.
5
منعم، م.؛ اسماعیلیراد، ا. ودخانچی،س.، 1367. طرح شناسایی گوسفندان بومی ایران (گوسفند مغانی). مؤسسه تحقیقات علوم دامی کشور. نشریه پژوهشی شماره 57.
6
قرهباش،ا.؛ قورچی، م.؛ حسنی، ت.؛ تربتینژاد،س.و منصوری، ه.، 1388. مقایسه اثرات شیر میش، جایگزین شیر و سه نوع جیره آغازین بر سنتز پروتئین میکروبی، فراسنجههای تخمیری شکمبه، متابولیتهای خون و ادرار برههای شیرخوار نژاد دالاق. علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی. شماره 4، صفحات 461 تا 470.
7
کاشکی، و.ا.؛ عبدیقزلجه، ع.ا. و توکلی، ح.، 1389. مقایسه دو سیستم سنتی و جدید پرورش برههای کردی. چهارمین کنگره علوم دامی ایران، پردیس کشاورزی و منابع طبیعی دانشگاه تهران.
8
عزیزی، ر.؛ میرشمسالهی، آ. و منصوری، ه.، 1395. بررسی اثر تغذیه جایگزین شیر گوساله بر عملکرد برههای شیرخوار فراهانی. تحقیقات کاربردی در علوم دامی. شماه ، صفحات 63 تا 70.
9
Brand, T.S. and Brundyn, L., 2015. Effect of supplementary feeding to ewes and suckling lambs on ewe and lamb live weights while grazing wheat stubble. South African Journal of Animal Science. Vol. 45, No. 1.
10
Fernandes, S.R.; Monteiro, A.L.G.; Silva, C.J.A.; Silva, M.G.B.; Rossi Junior, P.; Souza, D.F.; Salgado, J.A. and Hentz, F., 2011. Performance, carcass traits and costs of Suffolk lambs finishing systems with early weaning and controlled suckling Revista Brasileira de Saúde e Produção Animal. Vol. 12, pp: 527-537.
11
Fimbers, H.; Kawas, J.R.; Picon-Rubio, G. and Lu, C.D.,2002. Nutrient intake, digestibility, mastication & ruminal fermentation of lambs fed finishing ration with various forage levels. Small ruminant res.Vol. 43, pp: 275-281.
12
Garcia, C.A.; Costa, C.; Monteiro, A.L.G.; Neres, M.A. and Rosa, G.M.,2003. Performance & carcass traits of lambs fed diets with different energy levels grown in creep feeding. Revista brasileira de zootecnia. Vol. 32, pp: 1371-1379.
13
Ghanbari, A. and Sahraei, M., 2012. Determination of nutritional value in three forage species in three phonological stages in Sabalan rangelands, Ardebil, Iran. Journal of Rangeland Science. Vol. 2, No. 2.
14
Hart, S.P. and Glimp, H.A., 1991. Effect of diet composition and feed intake level on diet digestibility and rumenal metabolism in growth lambs. Journal of Animal Science. Vol. 69, pp: 1636-1644.
15
Keskin, M. and Blcher, O., 2002. Effects of milk replacer on kid growth and farm profitability in the Shami Goat, Turkish J veterinary and animal scie. Vol. 26, pp: 1133-1136.
16
Lane, M.A. and Jesse, B.W., 1997. Effect of volatile fatty acid infusion on development of the rumen epithelium in neonatal sheep. Jour of dairy science. Vol. 80, pp: 740-474.
17
Lane, M.A.; Baldwin, R.L. and Jesse, B.W., 2000. Sheep rumen metabolic development in response to age and dietary treatments. Jour of animal science. Vol. 78, pp: 1990-1996.
18
MorandFehr,P.,2005. Recent developments in goat nutrition and application: A review. Small ruminant research.
19
Vol. 60, pp: 25-43.
20
Napolitano, F.; De Rosa, G. and Sevi, A., 2008. Welfare implications of artificial rearing and early weaning in sheep. Applied Animal Behaviour Science. Vol. 110, pp: 58-72.
21
National Research Council. 2007. Nutrient requirements of small ruminants: sheep, goats, cervids and new world camelids. National Academy Press, Washington, DC.
22
Nockels, C.F.; Kintner, L.D. and Fander, W.H., 1966. Influence of ration on morphology, histology and trace mineral content of sheep rumen papilla, Journal of Dairy Science. Vol. 49, pp: 1068-1074.
23
Poe, S.E.; Ely, D.G.; Mitchell, G.E.; Glimp, H.A. and Deweese, W.P., 1971. Rumen development in lambs. II. Rumen metabolic changes. Journal of Animal Science. Vol. 32, pp: 989-993.
24
SAS Institute. 2004. SAS, Users Guide, Statistics, Version 9.1 ed. SAS Institute, Inc. Cary, NC.
25
Santra, A. and Karim, S.A., 1999. Effect of protein levels in creep mixture on nutrient utilization and growth performance of pre-weaner lambs. Small Ruminant Research. Vol. 33, No. 2, pp: 131-136.
26
Sanz Sampelayo, M.R.; Allegretti, L.; Extremera, F.G. and Boza, J., 2003. Growth, body composition and energy utilization in pre-ruminant goat kids, Effect of dry matter concentration in the milk replacer and animal age, Small Ruminant Research. Vol. 49, pp: 61-67.
27
Silva,M.G.B.; Monteiro,A.L.G.; Silva, C.J.A.; Fernandes, S.R.; Silva, A.L.P. and Paula, E.F.E., 2011. Strategies of early weaning and concentrate supplementation on the daily behavior of lambs produced on Tifton85 pasture. Revista brasileira de saúde e produção animal. Vol. 12, pp: 1084-1094.
28
Thompson, J. and Meyer, H., 1994. Body Condition Scoring of Sheep .EC 1433 Oregon State University.
29
Yanez Ruiz, D.R.; Moumen, A.; Martin Garcia, A.I. and Molina, A.E., 2004. Ruminal fermentation and degradation patterns, protozoa population and urinary purine derivatives excretion in goat and wethers fed diets based on two-stage olive cake: effect of PEG supply. Journal of Animal Science. Vol. 82, pp: 2023-2032.
30
ORIGINAL_ARTICLE
تأثیر لازالوسید بر اکوسیستم و پارامترهای شکمبه ای گوسفند قزل
تحقیق حاضر جهت بررسی تأثیر یونوفر لازالوسید بر پارامترهای شکمبه ایگوسفند قزل انجام شد. بدین منظور از 16 رأس گوسفند نر قزل در قالب طرح کاملاً تصادفی استفاده شد. جیره های غذایی براساس جداول احتیاجات غذایی بین المللی گوسفندان (1985) تهیه شد به گونه ای که حاوی 2/9 مگاکالری در کیلوگرم ماده خشک انرژی قابل متابولیسم و 15 درصد پروتئین خام در ماده خشک جیره بود. اجزای تشکیل دهنده جیره غذایی شامل یونجه، دانه جو، کنجاله سویا، دانه ذرت و سنگ آهک به ترتیب با 400، 488، 200، 589 و 20 گرم در کیلوگرم ماده خشک جیره بود. تیمارهای آزمایشی شامل سطوح مختلف لازالوسید (20، 25، 30 و 35 قسمت در میلیون ماده خشک جیره) بود. طول دوره آزماش 21 روز بود. مایع شکمبه 2 و 4 ساعت بعد از خوراک دهی صبحگاهی جمع آوری شد. در این تحقیق فاکتورهایی همانند pH شکمبه، زمان احیای متیلن بلو، زمان ترسیب شناوری، اسیدهای چرب فرار کل و نیتروژن آمونیاکی شکمبه اندازه گیری شد. pH شکمبه، زمان احیای متیلن بلو، زمان ترسیب شناوری و اسیدهای چرب فرار کل تحت تأثیر سطوح مختلف لازالوسید قرار نگرفت. نیتروژن آمونیاکی شکمبه با افزودن سطوح بالای لازالوسید کاهش معنی داری را نشان داد (0/05>p). نتایج نشان می دهد که استفاده از لازالوسید تا سطح 35 قسمت در میلیون ماده خشک جیره تأثیر منفی بر اکوسیستم و پارامترهای شکمبه ندارد و کاهش نیتروژن آمونیاکی شکمبه نشانگر کاهش فعالیت باکتری های تجزیه کننده پروتئین در شکمبه به واسطه افزودن لازالوسید می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_77032_d34b9692f609f8264eec5d05e4901b7d.pdf
2018-09-23
53
58
پارامترهای تخمیری
شکمبه
لازالوسید
نشخوارکنندگان
یونوفر
حمید
پایا
hamid.paya@tabrizu.ac.ir
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز، صندوق پستی: 5166616471
LEAD_AUTHOR
اکبر
تقی زاده
taghizadeh@tabrizu.ac.ir
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه تبریز، صندوق پستی: 5166616471
AUTHOR
مقدم، غ.ع. و تقی زاده، ا.، 1379. بررسی اکوسیستم شکمبه و اولتراسونوگرافی حرکات پیش معده در گاوهای شیری تغذیه با زئولیت. مجله دانش کشاورزی. جلد 10، شماره 1، صفحات 18 الی 23.
1
Abdoly, H.; Taghizadeh, A. and Tahmasbi, A., 2007. Effect of ionophore on rumen characteristics in sheep. Proceeding of AAAP Congress. 349 p.
2
Bergen, W.G. and Bates, D.B., 1984. Ionophores: Their effect on production efficiency and mode of action. J. Anim. Sci. Vol. 58, pp: 1465-1483.
3
Bohnert, D.W.; Harmon, D.L.; Dawson, K.A.; Larson, B.T.; Richards, C.J. and Streeter, M.N., 2000. Efficacy of laidlomycin propionate in low-protein diets fed to growing beef steers.: effects on steer performance and ruminal nitrogen metabolism. J. Anim. Sci. Vol. 78, pp: 173-180.
4
Campbell, C.G.; Titgemeyer, E.C.; Cochran, R.C.; Nagaraja, T.G. and Brandt, R.T., 1997. Free amino acid supplementation to steers: effects on ruminal fermentation and performance. J. Anim. Sci. Vol. 75, pp: 1167-1178.
5
Chalupa, W.; Corbett, W. and Brethour, J.R., 1980. Effect monensin and amiclora on rumen fermentation. J. Anim. Sci. Vol. 51, pp: 170-179.
6
Chen, G. and Russell, J.B., 1991. Effect of monensin and protonophore on protein degradation, peptide accumulation and deamination by mixed ruminal microorganisms in vitro. J. Anim. Sci. Vol. 62, pp: 2196-2203.
7
Dinius, D.A.; Simpson, M.E. and Marsh, B.P., 1976. Effect of monensin fed with forage on digestion and ruminal ecosystem of steers. J. Anim. Sci. Vol. 42, pp: 229-234.
8
Erasmus, L.J.; Smith, I.; Muller, A. and O'Hagant, D., 1999. Effect of lasalocid on performance of lactating cows. J. Dairy Sci. Vol. 82, pp: 1817-1823.
9
Erickson, P.S.; Davis, M.L.; Murdock, C.S.; Pastir, K.E.; Murphy, M.R.; Schwab, C.G. and Marden, J.I., 2004. Ionophore taste preferences of dairy heifers. J. Anim. Sci. Vol. 82, pp: 3314-3320.
10
Fellner, V.; Sauer, F.D. and Kramer, J.K.G., 1997. Effect of Nigericin, Monensin and teronasin on biohydrogenation in continuous flow-through ruminal fermenters. J. Dairy Sci. Vol. 80, pp: 921-928.
11
Hesni, V.; Taghizadeh, A.; Paya, H.; Janmohamadi, H.; Moghadam, G.H. and Pirani, N., 2007. Effect of monensin and lasalocid on rumen fermentation in sheep. Proceeding of the British Society of Animal Science. 221 p.
12
Holdsworth, P., 2003. The role of enteric antibiotics in livestock production. Published in 2003 Australia.
13
Ives, S.E.; Tigemeyer, E.C.; Nagaraja, T.G.; Barrio, A.;Bindel,D.J.andHollis,L.C.,2002.Effects of virginiamycin and monensin plus tylosin on ruminal protein metabolism in steers fed corn based finishing diets with or without wet corn gluten feed. J. Anim. Sci. Vol. 80, pp: 3005-3015.
14
Lean, I.J.; Wade, L. and Bechet, S.D., 1997. Bovine somatotropin and monensin: emerging technologies. Dept. Of Anim. Sci. University of Sydney Australia.
15
Martin, S.A. and Macy. J.M., 1985. Effects of monensin, pyromellitic diimide & 2-bromoehtan sulfonic acid on rumen fermentation in vitro. J. Anim. Sci. Vol. 60, pp: 544-550.
16
Morris, F.E.; Branine, M.E.; Galyean, M.L.; Hubbert, M.E.; Freeman, A.S. and Lofgrean, G.P., 1990. effect of rotating monensin plus tylosin and lasalocid on Performance, ruminal fermentation, and site and extent of digestion in feedlot Cattle. J. Anim.Sci. Vol. 68, pp: 3069-3078.
17
Nagaraja, T.G., 1995. Ionophore and antibiotics in ruminants. Biotechnology in animal feeding. pp: 173-204. VCH Publishers, New York.
18
Perry, T.W.; Beeson, W.M. and Mohler, M.T., 1976. Effect of monensin on beef cattle performance. J. Anim. Sci. Vol. 42, pp: 761-765.
19
Russell, J.B. and Hespell, R.B., 1981. Microbial rumen fermentation. J. Dairy Sci. Vol. 64, pp: 1153-1169.
20
Swanson, K.C.; Reynolds, L.P. and Caton, J.S., 2000. Influence of dietary intake and lasalocid on serum hormones and metabolites and visceral organ growth and morphology in wether lambs. J. Small Rumin Rese. Vol. 35, pp: 235-247.
21
Thivend, P. and Jouany. J.P., 1983. Effect of lasalocid sodium on rumen fermentation and production by steers. J. Anim. Sci. Vol. 52, pp: 628-634.
22
Wessels, R.H.; Titgemeyer, E.C.; Armendariz, C.K. and Jean, G.ST., 1996. Lasalocid effects on ruminal degradation of protein and postruminal supply of amino acids on Holstein steers. J. Dairy Sci. Vol. 79, pp: 1802-1808.
23
Yang, C.M.J. and Russell, J.B., 1993. The effect of monensin supplementation on ruminal ammonia accumulation in vivo and the numbers of amino acid-fermenting bacteria. J. Anim. Sci. Vol. 71, pp: 3470-3476.
24
Yang, C.M.J.; Chang, C.T.; Huang, S.C. and Chang, T., 2003. effect of lasalocid on growth, blood gasses and nutrient utilization in dairy goats fed high forage, low protein diet. J. Dairy Sci. Vol. 86, pp: 3967-3971.
25
ORIGINAL_ARTICLE
تدوین راهبردهای استراتژیک کاهش انتشار گازهای گلخانه ای با منشاء علوم دامی
تاثیرات بسیار مخرب تغییرات اقلیمی ایجاد شده از ناحیه تولید گازهای گلخانه ای، از جمله گرم تر شدن کره زمین، خشکسالی های متوالی و غرق شدن کشورهای جزیره ای می باشد. لذا در جهت کاهش گازهای گلخانه ای مرتبط با فعالیت رشته علوم دامی و نیز ایجاد چتر حمایتی تحقیقاتی بر روی پروژه های علوم دامی، این پژوهش انجام شد. از طریق جستجو در فضای مجازی، کتابخانه ها و سایت های تخصصی و نیز تشکیل جلسات متعدد و شرکت درسخنرانی های صاحب نظران بین المللی و تنظیم پرسشنامه های ویژه، راهکارها و راهبردهای تحقیقاتی به صورت طرح های کلان و پروژه های تحقیقاتی، ارائه شدند. در راستای کاهش گازهای گلخانه ای با منشا علوم دامی و ایجاد زنجیره کامل تحقیقاتی، تعداد هشت راهبرد تحقیقاتی مشتمل بر مطالعات در مورد انواع دام های اهلی و پایش تعداد آن ها در ایران، بهبود و اصلاح نژاد دام های نشخوارکننده در ایران، راهکارهای تغذیه ای و افزایش ارزش غذایی خوراک های بی کیفیت دام و طیور در ایران، اصلاح میکروارگانیسم های شکمبه، تحقیقات مرتبط با ساختمان و تاسیسات دامپروری، اصلاح ساختار کشتارگاه های دام و طیور، تغییر و اصلاح الگوی مصرف سوخت و تولید زیست گاز در ایران و نیز تغییر و اصلاح الگوی مصرف مواد پروتئینی حیوانی در ایران، در قالب 59 یافته کاربردی، ب هدست آمد. به طورکلی انجام تعهدات ملی و بین المللی، تدوین و اجرای راهبردهای تحقیقاتی به صورت ایجاد یک زنجیره کامل پژوهشی، تشکیل چتر کنترلی تحقیقاتی در پروژه های علوم دامی و آموزش همگانی (مردم و دامداری های صنعتی) از جمله مهم ترین راهکارهای به دست آمده، می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_79971_fd0dc4e8867f2607f6f1429d03231709.pdf
2018-09-23
59
64
گازهای گلخانه ای
کاهش انتشار
علوم دامی
امیر رضا
صفایی
amirrezasafaei@gmail.com
1
موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
علیرضا
آقاشاهی
aghashahimobin@gmail.com
2
موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
AUTHOR
مرتضی
رضائی
amirsaleh1380@gmail.com
3
موسسه تحقیقات علوم دامی کشور، سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، کرج، ایران
AUTHOR
سیدعلی اکبر
رضائی طالشی
rezaeitaleshi@yahoo.com
4
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
مصطفی
جعفری
amirrezasafaei@yahoo.com
5
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
صفایی، ا.م.،1393. اثرات بیولوژیکی تفاله انگور بر تولید گاز متان، تجزیه پذیری و بهبود عملکرد در نشخوارکنندگان. رساله دکتری پردیس کشاورزی و منابع طبیعی گرگان.
1
صفایی، ا.م.؛ تربتی نژاد، ن.م.؛ منصوری، ه. و زره داران، س.، 1393. اثرات افزودن پلی اتیلن گلیکول بر تولید گاز متان در شکمبه، قابلیت هضم و انرژی قابلمتابولیسم تفاله های انگور و لیموترش. پژوهش های تولیدات دامی. سال 5، شماره 9، صفحات 83 تا 95.
2
صفایی، ا.م.؛ صادقی پناه، ح. و مشیرغفاری، ف.، 1395. بررسی مزایا و معایب تولید بیوگاز از کود دامی. مجموع مقالات سومین کنگره علمی پژوهشی توسعه و ترویج علوم کشاورزی، منابع طبیعی و محیط زیست ایران.
3
جعفری، م.، 2014. آسیب پذیری و برنامه های تطبیق و سازگاری در جنگل ها و مراتع، سومین گزارش ملی تغییر آب و هوا، دفتر ملی تغییر آب و هوا. 110 صفحه.
4
محرری، ع.، 1382. نقش حیوانات اهلی در تولید گاز NO2 به عنوان یکی از گازهای گلخانه ای. سومین کنفرانس منطقه ای و اولین کنفرانس ملی تغییر اقلیم. اصفهان. ایران.
5
مساح بوانی، ک.، 2014. گزارش اقلیم، سومین گزارش ملی تغییر آب و هوا، دفتر ملی تغییر آب و هوا.
6
مرادی، ا. و امینیان، م.، 1391. میزان نشر گازهای گلخانه ایران در سال 1389. نشریه نشاء. سال 3.
7
نوروزی، ر. و خسروی، م.، 1389. چشمه ها و چاهک های انتشار گاز گلخانه ای متان و نقش آن در پدیده گرمایش جهانی. چهارمین کنگره بین المللی جغرافیدانان جهان اسلام. زاهدان. ایران.
8
نوریان سرور، ا. و روزبهان، ی.، 1391.تاثیر عصاره گل گاو زبان برتخمیر شکمبه ای، جمعیت پروتوزوآیی و کاهش تولید گاز متان به روش برونتنی. مجله علوم دامی ایران. سال 43، شماره 2، صفحات 66 تا 78.
9
ADB. 2009. Improving Energy Security and Reducing Carbon Intensity in Asia and the Pacific. Asian Development Bank, Manila, Philippines. ISBN: 978-971-561-843-4.
10
ADB. 2010. Asian Development Outlook 2010 Update: The Future of Growth in Asia. Asian Development Bank, Andaluyong City, Philippines. ISBN: 978-92-9092-156-1.
11
ADB, UNEP and UNESCAP. 2012. Green Growth, Resources and Resilience: Environmental Sustainability in Asia and the Pacific. United Nations and Asian Development Bank, Bangkok, Thailand. ISBN: 978-92-1-120635-7.
12
Aichele, R. and Felbermayr, G., 2012. Kyoto and the carbon footprint of nations. Journal of Environmental Economics and Management. Vol. 63, pp: 336-354.
13
Botzen, W.J.W.; Gowdy, J.M. and van den Bergh, J.C.J.M., 2008. Cumulative CO2 emissions: Shifting international esponsibilities for climate debt. Climate Policy. Vol. 8, pp: 569-576.
14
Boussena, S. and Locatelli, C., 2013. Energy institutional and organisational changes in EU and Russia: Revisiting gas relations. Energy Policy Vol. 55, pp: 180-189.
15
Bowen, A. and Fankhauser, S., 2011. Low carbon development for Least Developed Countries. World Economics. Vol. 12, pp: 145-162.
16
Bowen, A.; Forster, P.M.; Gouldson, A.: Hubacek, K.; Martin, R.; O’Neill, D.W.; Rap, A. and Alexandru, J. 2009. The Implications of the Economic Slowdown for Greenhouse Gas Emissions and Targets. Centre for Climate Change Economics and Policy, London, UK.
17
Brewer, T.L., 2010. Trade policies and climate change policies: a rapidly expanding joint agenda. The World Economy. Vol. 33, pp: 799-809.
18
Burney, J.A.; Davis, S.J. and Lobell, D.B., 2010. Greenhouse gas mitigation by agricultural intensification. Proceedings of the National Academy of Sciences. Vol. 107, pp: 12052-12057.
19
Church, D.C., 1991. Livestock Feeds and Feeding. Prentice Hall. International, Inc. 350. (3ed.) pp: 97-99.
20
Cornia, G., 2011. Developing the poorest countries: ney ideas from the 2010 UNCTAD LDC Report. European Journal of Development Research. Vol. 23, pp: 12-16.
21
Daniel, J.S.; Solomon, S.; Sanford, T.J.; McFarland, M.; Fuglestvedt, J.S. and Friedlingstein, P., 2012. Limitations of single-basket trading: Lessons from the Montreal Protocol for climate policy. Climatic Change. Vol. 111, pp: 241-248.
22
FAO (Food and Agriculture Organization). 2015. Statistic. Statistical Year Book.
23
Halimi-Shabestari, A.; Salamatdoust-nobar, R.; Maheri Sis, N.; Ghorbani, A.; Mirzadeh-Ahari, K.; Noshadi, A.; Samadi, H. and Saliminezhad, J., 2011. Evaluation effects of clove methanol extract on methane production in the in vitro condition. Pakistan Journal of Nutrition. Vol. 10, No. 12, pp: 1154-1157.
24
Hao, X.; Benke, M.B.; Li, C.; Larney, F.J.; Beauchemin, K.A. and McAllister, T.A., 2011. Nitrogen transformations and greenhouse gas emissions during composting of manure from cattle fed diets containing corn dried distiller's grains with solubles and condensed tannins. Journal of Animal Feed Science and Technology. pp: 166-167, 539-549.
25
Hegarty, R.S., 2010. Nutritional management options to reduce enteric methane emissions from NSW beef and dairy herds. Proceedings of the 24th Annual Conference of the Grassland Society of NSW.
26
Hentges,F.;Bates,R.P.andWasdin,G.,1985. Acceptability of grape winery pomace a cattle feed. Journal of Animal science and Food Science and Human. Vol. 83, pp: 53-58.
27
Hindrichsen, I.K.; Wettstein, H.R.; Machmüller, A. and Kreuzer, M., 2005. Effects of concentrates characterized by different carbohydrates on methane emission by dairy cows and corresponding effects on methane production in the slurries. Institute of Animal Sciences. Animal Nutrition. Swiss Federal Institute of Technology (ETH) Zurich. ETH Center/LFW, CH-8092. Zurich. Switzerland. 278 p.
28
IPCC. 1997. Revised 1996 IPCC Guidelines for National Greenhouse Gas Inventories. Intergovernmental Panel on Climate Change (IPCC)/Organisation for Economic Co operation and Development (OECD)/International Energy Agency (IEA), Bracknell, UK.
29
IPCC.2006. Guidelines for national greenhouse gas inventories. Intergovernmental panel on climate change, Institute for global environmental strategies, Kanagawa, Japan.
30
IPCC. 2014. Working Group III–Mitigation of climate change. Chapter 11: Agriculture, forestry and other land use (AFOLU). Cambridge Univ. Press, Cambridge, UK.
31
McCarthy, G., 2011. The U.S. Government's Global Methane Initiative Accomplishments. Annual report. Environmental Protection Agency. USA. 31 p.
32
Makkar, H.P.S. and Vercoe, P.E., 2007. Measuring Methane Production from Ruminants. Eds. Springer: Dordrecht. The Netherlands. 148 p.
33
Menke, K.H. and Steingass, H., 1988. Estimation of energetic feed value obtained from chemical analysis and in vitro production using rumen fluid. Journal of Animal Research and Development. Vol. 28, pp: 7-55.
34
OECD. 2013. OECD DAC Statistics on Climate-Related Aid. OECD, Paris, France.
35
Patra, A.K. and Saxena, J., 2009. Dietary phytochemicals as rumen modifiers: a review of the effects on microbial populations. Antonie van Leeuwenhoek. Journal of Animal Feed Science Technology. Vol. 96, pp: 363-375.
36
Rogner, H.H., 2012. Energy resources. In: Energy for Development: Resources, Technologies, Environment. F. L. Toth, (ed.), Springer, Dordrecht, Netherlands. pp: 149-160.
37
Sirohi, S.K.; Pandey, N.; Goel, N.; Singh, B.; Mohini, M.; Pandey, P. and Chaudhry, P.P., 2009. Microbial activity and ruminal methanogenesis as affected by plant secondary metabolites in different plant extracts. International Journal of Environmental Science and Engineering. Vol. 1, No. 1, pp: 52-58.
38
Wright, A.G. and Klieve, A.V., 2011. Does the complexity of the rumen microbial ecology preclude methane mitigation? Journal of animal feed science and technology. Vol. 167,pp: 248-253.
39
ORIGINAL_ARTICLE
اثر افزودنی لاکتوباسیلوس بوچنری بر روی خصوصیات شیمیایی و پایداری هوازی سیلاژ یونجه مکمل شده با ملاس یا تفاله پرتقال
هدف از این طرح بررسی اثرات افزودنی تجاری لالسیل (لاکتوباسیلوس بوچنری) بر روی خصوصیات شیمیایی سیلاژ یونجه مکمل شده با ملاس یا تفاله پرتقال بود. تیمارهای آزمایشی شامل 1: علوفه یونجه (تیمار شاهد)، 2: علوفه یونجه به همراه افزودنی باکتریاییcfu 108×3 بر گرم، 3: علوفه یونجه به همراه تفاله پرتقال، 4: علوفه یونجه به همراه تفاله پرتقال و افزودنی باکتریاییcfu 108×3 بر گرم، 5: علوفه یونجه به همراه 5 درصد ملاس، 6: علوفه یونجه به همراه 5درصد ملاس و افزودنی باکتریایی cfu 108×3 بر گرم بودند. علوفه یونجه در مرحله گلدهی برداشت و پس از 24 ساعت پلاسیده شدن به همراه تفاله پرتقال با سطح ذکر شده لالسیل با نسبت وزنی 2100 گرم یونجه پلاسیده و760 گرم تفاله پرتقال به مدت 90 روز سیلو گردید. دادههای به دست آمده در قالب طرح آماری کاملاً تصادفی با 3 تکرار تجزیه و تحلیل گردید. افزودن تفاله پرتقال، ملاس و افزودنی باکتریایی سبب ایجاد تغییرات معنیداری در ماده خشک نسبت به تیمار شاهد گردید (0/05>pH. (p تمام نمونهها کم تر از 4/55 بود اما pH تیمار شاهد در مقایسه با سایر تیمارها بالاتر بود (0/05>p). افزودن تفاله پرتقال، ملاس و مکمل باکتریایی به یونجه پلاسیده سبب افزایش معنیدار کل اسیدهای چرب فرار شد (0/05>p). افزودنی باکتریایی لالسیل به همراه تفاله پرتقال یا ملاس با در دسترس قرار دادن کربوهیدرات قابل تخمیر برای لاکتوباسیلها و کاهش سریع pH و محدود نمودن رشد مخمرها و قارچها منجر به بهبود کیفیت سیلاژ حاصله میگردد.
http://www.aejournal.ir/article_80247_ca3b85bf6327e2b44eeb1c61dade761f.pdf
2018-09-23
65
72
افزودنی باکتریایی
تفاله پرتقال
سیلاژ یونجه
شاخص کیفی
کربوهیدرات محلول
نیلوفر
شفیع پور
niloofar6_shafipoor@yahoo.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی اهر، دانشگاه تبریز
AUTHOR
مقصود
بشارتی
m_besharati@hotmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی اهر، دانشگاه تبریز
LEAD_AUTHOR
عین اله
عبدی
e_abdi2005@yahoo.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی اهر، دانشگاه تبریز
AUTHOR
ذبیح اله
نعمتی
znnemati@yahoo.com
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی اهر، دانشگاه تبریز
AUTHOR
اسدیالموتی، ع.؛ علیخانی، م.؛ قربانی، غ.ر. و سمیع، ع.ح.، 1383. اثر افزودنیهای مختلف بر کیفیت تخمیر سیلوی ارزن در شرایط آزمایشگاهی. مجله علوم و فنون کشاورزی و منابع طبیعی. شماره 3، صفحات 149 تا 161.
1
سیدمومن،س.م.، 1382. مطالعه اثرات سطوح بقایای پوستگیری و تانن موجود در آن بر رشد بدن و تولید کرک بز کرکی راینی. پایاننامه کارشناسیارشد علوم دامی. دانشگاه آزاداسلامی واحد کرج.
2
Adesogan, A.T.; Krueger, N.; Salawu, M.B.; Dean, D.B. and Staples, C.R., 2004. The influence of treatment with dual purpose bacterial inoculants or soluble carbohydrates on the fermentation and aerobic stability of bermudagrass. J. Dairy Sci. Vol. 87, pp: 3407-3416.
3
Aksu, T.; Baytok, E.; Karslı, M.A. and Muruz, H., 2006. Efects of formic acid, molasses and inioculant additives on corn silage composition, organic matter digestibity and microbial protein synthsis in ship. Small Rumin. Res. Vol. 61, pp: 29-33.
4
Anderson, B.K. and Jackson, N., 1970. Conservation of wilted and unwilted grass in air-tight metal containers with or without the addition of molasses. J. Sci. Food Agr. Vol. 21, pp: 235-239.
5
AOAC. 2002. Association of Official Analytical Chemists. Official Methods of Analysis. 17th ed. AOAC. Arlington. VA.
6
Baytok, E.; Aksu, T.; Karsli, M.A. and Muruz, H., 2005. The effects of formic acid, molasses and inoculant as silage additives on corn silage composition and ruminal fermentation characteristics in sheep. Turk. J. Vet. Anim. Sci. Vol. 29, pp: 469-474.
7
Bouriako, I.A.; Shihab, H.; Kuri, V. and Margerison, J.K., 2001. Influence of wilting time on silage compositional quality and microbiology of grass clover mixtures. Proc Br Soc Anim Sci. 88 p.
8
Contreras-Govea, F.E.; Muck, R.E.; Mertens, D.R. and Weimer, P.J., 2010. Microbial inoculant effects on silage and in vitro ruminal fermentation, and microbial biomass estimation for alfalfa, bmr corn, and corn silages. Anim. Feed Sci. Tech. Vol. 163, No. 1, pp: 2-10.
9
Dawson, F.; Steen, B.; Gordon, F. and Kilpatrick, S., 1999. The effects of wilting grass before ensiling on silage intake. Grass Forage Sci. Vol. 54, pp: 237-247.
10
Driehuis, F.; Oude Elferink, S.J.W.H.; and Van Wikselaar, P.G., 2001. Fermentation characteristics and aerobic stability of grass silage inoculated with Lactobacillus buchneri, with or without homofermentative lactic acid bacteria. Grass Forage Sci. Vol. 56, pp: 330-343.
11
Dubios, A.; Giles, M.K.A.; Hamilton, J.K.; Ronerts, P.A. and Smith, F., 1956. Colorometric method for determination of sugars and related substances. Anal. Chem. Vol. 28, 350 p.
12
Filya, I., 2003a. The effect of Lactobacillus buchneri and Lactobacillus plantarum on the fermentation, aerobic stability, and ruminal degradability of low dry matter corn and sorghum silages. J. Dairy Sci. Vol. 86, pp: 3575-3581.
13
Filya, I., 2003b. The effect of Lactobacillus buchneri, with or without homofermentative lactic acid bacteria, on the fermentation, aerobic stability and ruminal degradability of wheat, sorghum and maize silages. J. Appl. Mic. Vol. 95, pp:1080-1086.
14
Filya, I.; Muck, R.E. and Contreras-Govea, F.E., 2007. Inoculant effects on alfalfa silage: fermentation products and nutritive value. J. Dairy Sci. Vol. 90, pp: 5108–5114.
15
Filya, I.; Sucu, E. and Karabulut, A., 2006. The effects of Propionibacterium acidipropionici and Lactobacillus plantarum, applied at ensiling, on the fermentation and aerobic stability of low dry matter corn and sorghum silages. J. Ind. Microb. Biot. Vol. 33, pp: 353-358.
16
Gordon, F.J., 1981. The effect of wilting of herbage on silage composition and its feeding value for milk production. Anim. Prod. Vol. 32, pp: 171-178.
17
Gordon, F.J.; Dawson, L.E.R.; Ferris, C.P.; Steen, R.W.J. and Kilpatrick, D.J., 1999. The influence of wilting and forage additive type on the energy utilisation of grass silage by growing cattle. Anim. Feed Sci. Tech. Vol. 79, pp:15-27.
18
Hashemzadeh-Cigari, F.; Khorvash, M.; Ghorbani, G.R. and Taghizadeh, A., 2011. The effects of wilting, molasses and inoculants on the fermentation quality and nutritive value of lucerne silage. South African Soci. Animal Sci. Vol. 41, pp: 377-388.
19
Hashemzadeh-Cigari, F.; Khorvash, M.; Ghorbani, G.R.; Ghasemi, E.; Taghizadeh, A.; Kargar, S. and Yang, W.Z., 2014. Interactive effects of molasses by homofermentative and heterofermentative inoculants on fermentation quality, nitrogen fractionation, nutritive value and aerobic stability of wilted alfalfa (Medicago sativa L) silage. J. Anim. Physiol. Anim. Nutri. Vol. 98, pp: 290-299.
20
Holzer, M.; Mayrhuber, E.; Danner, H. and Braun, R., 2003. The role of Lactobacillus buchneri in forage preservation. TRENDS in Biotechnol. Vol. 21, No. 6, pp:282-287.
21
Hristov, A.N. and Sandev, S.G., 1998. Proteolysis and rumen degradability of protein in alfalfa preserved as silage, haylage or hay. Anim. Feed Sci. Tech. Vol. 72, pp:175–181.
22
Hu, W.; Schmidt, R.J.; McDonell, E.E.; Klingerman, C.M. and Kung, Jr.L., 2009. The effect of Lactobacillus buchneri 40788 or Lactobacillus plantarum MTD-1 on the fermentation and aerobic stability of corn silages ensiled at two dry matter contents. J. Dairy Sci. Vol. 92, No. 8, pp: 3907-3914.
23
Islam, M.; Enishi, O.; Purnomohadi, A.; Higuchi, K.; Takusari, N. and Terada, F., 2001. energy and protein utilization by goats fed Italian ryegrass silage treated with molasses, urea, cellulase or cellulase + lactic acid bacteria. Small Ruminant Res. Vol. 42, pp: 49-60.
24
Khan, M.A.; Sarwar, M.; Nisa, M.; Iqbal, Z.; Khan, M.S.; Lee, W.S.; Lee, H.J. and Kim, H.S., 2006. Chemical composition, in situ digestion kinetics and feeding value of Oat grass (Avena sativa) ensiled with molasses for Nili-Ravi Buffaloes. Asian-Aust. J. Anim. Sci. Vol. 19, pp: 1127-1133.
25
Kizilsimsek, M.; Schmidt, R.J. and Kung, L., 2007. Effects of a mixture of lactic Acid bacteria applied as a freeze-dried or fresh culture on the fermentation of alfalfa silage. J. Dairy Sci. Vol. 90, pp: 5698-5705.
26
Kleinschmit, D.H. and Kung, Jr.L., 2006. A Meta-Analysis of the Effects of Lactobacillus buchneri on the Fermentation and Aerobic Stability of Corn and Grass and Small-Grain Silages. J. Dairy Sci. Vol. 89, pp: 4005-4013.
27
Kung, Jr.L. and Ranjit, N.K., 2001. The Effect of Lactobacillus buchneri and Other Additives on the Fermentation and Aerobic Stability of Barley Silage. J. Dairy Sci. Vol. 84, pp: 1149-1155.
28
Kung, Jr.L.; Grieve, D.B.; Thomas, J.W. and Huber, J.T., 1984. Added ammonia ormicrobial inocula for fermentation and nitrogenous compounds of alfalfa ensiled at various percents of dry matter. J. Dairy Sci. Vol. 67,
29
pp: 299-306.
30
Luchini, N.D.; Broderick, G.A.; Muck, R.E.; Makoni, N.F. and Vetter, R.L., 1997. Effect of storage system and dry matter content on the composition of alfalfa silage. J. Dairy Sci. Vol. 80, pp: 1827-1832.
31
Markham, R., 1942. A steam distillation apparatus suitable for micro-Kjeldahl analysis. Biochem. J. Vol. 36, 790 p.
32
McAllister, T.A.; Feniuk, R.; Mir, Z.; Mir, P.; Selinger, L.B. and Cheng, K.J., 1998. Inoculants for alfalfa silage: Effects on aerobic stability, digestibility and the growth performance of feedlot steers. Livest. Prod. Sci. Vol. 53, pp: 171-181.
33
Miller, W.J.; Dalton, H.L. and Miller, J.K., 1959. Immature Forage Mixtures with Citrus Pulp versus More Mature Forage without Additive for Silage. 1Journal Paper No. 115 of the College Experiment Station University of Georgia, College of Agriculture Experiment Stations.
34
Muck, R.E. and Kung, L., 1997. Effects of silage additives on ensiling. Proceedings of the Silage: Field to Feedbunk North American Conference, Hershey.
35
Muck, R.E. and Walgenbach, R.P., 1985. Alfalfa buffering capacities: Unpublished data. USDA, ARS, Madison, WI.
36
Muck, R.E., 1987. Dry matter level effects on alfalfa silage quality. 1. Nitrogen transformations. Trans. ASAE. Vol. 30, pp: 7-14.
37
Nadeau, E.M.G.; Buxton, D.R.; Russell, J.R.; Allison, M.J. and Young, J.W., 2000. Enzyme, bacterial inoculant, and formic acid effect on silage composition of orchardgrass and alfalfa. J. Dairy Sci. Vol. 83, pp: 1487-1502.
38
Oude Elferink, S.J.W.H.; Krooneman, J.; Gottschal, J.C.; Spoelstra, S.F.; Faber, F. and Driehuis, F., 2001. Anaerobic conversion of lactic acid to acetic acid and 1,2-propanediol by Lactobacillus buchneri. Appl. Environ. Microbiol. Vol. 67, pp: 125-132.
39
Ranjit, N.K. and Kung, Jr.L., 2000. The Effect of Lactobacillus buchneri, Lactobacillus plantarum, or a Chemical Preservative on the Fermentation and Aerobic Stability of Corn Silage. J. Dairy Sci. Vol. 83, pp: 526-535.
40
Schmidt, R.J.; Hu, W.; Mills, J.A. and Kung, Jr.L., 2009. The development of lactic acid bacteria and Lactobacillus buchneri and their effects on the fermentation of alfalfa silage. J. Dairy Sci. Vol. 92, pp: 5005-5010.
41
Silva, A.G.; Wanderley, R.C.; Pedroso, A.F. and Ashbell, G., 1997. Ruminal digestion kinetics of citrus peel. Anim. Feed Sci. Technol. Vol. 68, pp: 247-257.
42
Thomas, M.E.; Foster, J.L.; McCuistion, K.C.; Redmon, L.A. and Jessup, R.W., 2013. Nutritive value, fermentation characteristics, and in situ disappearance kinetics of sorghum silage treated with inoculants. Journal of Dairy Science. Vol. 96, No. 11, pp: 7120-7131.
43
Van Soest, P.J.; Robertson, J.B. and Lewis, B.A., 1991. Methods for dietary fiber, neutral detergent fiber, and nonstarch polysaccharides in relation to animal nutrition. Journal of Dairy Sci. Vol. 74, pp: 3583.
44
Volanis,M.; Zoiopoulos, P. and Tzerakis, K., 2006. Effects of feeding ensiled sliced oranges to lactating dairy sheep. Small Rumin. Reas. Vol. 53, pp: 15-21.
45
Weinberg, Z.G.; Ashbell, G.; Bolsen, K.K.; Pahlow, G.; Hen, Y. and Azrieli, A., 2007. The effect of a prop ionic acid bacterial inoculant applied at ensiling, with or without lactic acid bacteria, on the aerobic stability of pearl-millet and maize silages. Journal of Applied Microbiol. Vol. 78, pp: 430-436.
46
Whiter, A.G. and Kung, L., 2001. The effect of a dry or liquid application of Lactobacillus plantarum MTD1 on the fermentation of alfalfa silage. Journal of Dairy Sci. Vol. 84, pp: 2195-2202.
47
Woolford, M.K., 1990. The detrimental effects of air on silage. Journal of Applied Bacteriol. Vol. 68, pp: 101-116.
48
Zahiroddini, H.; Baah, J.; Absalom, W. and McAllister, T.A., 2004. Effect of an inoculant and hydrolytic enzymes on fermentation and nutritive value of whole crop barley silage. Anim. feed Sci. Technol. Vol. 117, pp: 317-330.
49
ORIGINAL_ARTICLE
پراکسیداسیون لیپیدهای غشایی و کیفیت پارامترهای اسپرمی در موش های نر نژاد Balb/c تیمار شده با غلظت های مختلف سم دیازینون
با توجه به نقش احتمالی دیازینون (DZN) در القاء تولید رادیکال های آزاد، احتمال می رود که سبب افزایش اکسیداسیون لیپیدهای غشایی اسپرم و در پی آن کاهش کیفیت پارامترهای اسپرم گردد. در این مطالعه اثرات سمی دیازینون بر پارامترهای اسپرم و اکسیداسیون لیپیدهای غشایی اسپرم در مایع سمینال موش نر مورد بررسی قرار گرفته است. در این مطالعه تجربی، 24 موش نر بالغ از نژاد سوری به صورت تصادفی به سه گروه تجربی و یک گروه شاهد تقسیم شدند. سم دیازینون با غلظت های 5 (گروه A)، ده (گروه B) و 25 (گروه C) میلی گرم به ازای هر کیلوگرم از وزن در هر روز، به ترتیب به گروه های اول تا سوم مورد مطالعه و به صورت دهانی به مدت پنج هفته داده شد. سپس غلظت مالون دی آلدئید (MDA) در سرم و مایع سمینال به روش (TBAR (Thiobarbituric acid reaction با دستگاه اسپکتروفتومتر مورد آماده سازی قرار گرفت. پارامترهای اسپرمی نیز به روش های معمول میکروسکوپی مورد آنالیز قرار گرفت. کاهش معنی داری در میانگین کیفیت پارامترهای اسپرمی در گروه های تیمار شده با سم دیازینون، به خصوص گروه های B و C در مقایسه با گروه شاهد مشاهده گردید (0/001>p). تفاوت معنی داری در میانگین غلظت MDA در سرم و مایع سمینال بین گروه های تیمار شده A، B، C و گروه شاهد مشاهده گردید (0/001>p). سم دیازینون با افزایش اکسیداسیون لیپیدهای غشایی سبب کاهش پارامترهای اسپرمی می گردد که اثرات آن وابسته دوز نیز می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_80125_78323164058677cba1462c2d8bd7ace5.pdf
2018-09-23
73
78
سم دیازینون
پارامترهای اسپرم
استرس اکسیداتیو
مالون دی آلدئید (MDA)
موش نر
عیسی
لیالی
tahmasb@hotmail.com
1
گروه بیوشیمی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد ساری، ایران
LEAD_AUTHOR
Adamkovicova, M.; Toman, R.; Martiniakova, M.; Omelka, R.; Babosova, R.; Krajcovicova, V.; Grosskopf, G. and Massanyi, P., 2016. Sperm motility and morphology changes in rats exposed to cadmium and diazinon. Reprod Biol Endocrinol. Vol. 14, No.1, 42 p.
1
Boussabbeh, M.; Ben Salem, I.; Hamdi, M.; Ben Fradj, S.; Abid-Essefi, S. and Bacha, H., 2016. Diazinon, an organophosphate pesticide, induces oxidative stress and genotoxicity in cells deriving from large intestine. Environ Sci Pollut Res Int. Vol. 23, No. 3, pp: 2882-2889.
2
Briceno, G.; Schalchli, H.; Rubilar, O.; Tortella, G.R.; Mutis, A.; Benimeli, C.S.; Palma, G. and Diez, M.C., 2016. Increased diazinon hydrolysis to 2-isopropyl-6-methyl-4 pyrimidinol in liquid medium by a specific Streptomyces mixed culture. Chemosphere. Vol. 156, pp: 195-203.
3
Fattahi, E.; Parivar, K.; Jorsaraei, S.G.A. and Moghadamnia, A.A., 2009. The effects of diazinon on testosterone, FSH and LH levels and testicular tissue in mice. Iranian Journal of Reproductive Medicine. Vol. 7, pp: 59-64.
4
Gao, B.; Bian, X.; Mahbub, R. and Lu, K., 2017. Sex Specific Effects of Organophosphate Diazinon on the Gut Microbiome and Its Metabolic Functions. Environ Health Perspect. Vol. 125, No. 2, pp: 198-206.
5
Hosseinzadeh Colagar, A.; Pouramir, M.; Tahmasbpour Marzony, E. and Jorsaraei, S.G.A., 2009. Relationship between seminal malondialdehyde levels and sperm quality in fertile and infertile men. Braz. arch. biol. Technol. Vol. 52, No. 6, pp:1387-1392.
6
Jafari, F.; Samadi, S.; Nowroozi, A.; Sadrjavadi, K.; Moradi, S.; Ashrafi-Kooshk, M.R. and Shahlaei, M., 2017. Experimental and Computational studies on the Binding of Diazinon to Human Serum Albumin. J Biomol Struct Dyn. pp: 1-59.
7
Jorsaraei, S.G.A.; Firoozjaee, A.; Pasha, Y.Y.; Tahmasbpour Marzony, E. and Sarabi, E., 2010. Histopathological Effects of Single Dose Treatment of Diazinon on Testes Structure in Rat. Cell Journal. Vol. 12, No. 1, pp: 39-42.
8
Ogasawara, N.; Matsushima, M.; Kawamura, N.; Atsumi, K.; Yamaguchi, T.; Ochi, H.; Kusatsugu, Y.; Hashimoto, N.; Hasegawa, Y.; Ueyama, J. and Kawabe, T., 2017. Modulation of immunological activity on macrophages induced by diazinon. Toxicology. Vol. 379, pp: 22-30.
9
Pina-Guzman, B.; Solis-Heredia, M.J, and Quintanilla Vega, B., 2005. Diazinon alters sperm chromatin structure in mice by phosphorylating nuclear protamines. Toxicol Appl Pharmacol. Vol. 202, No. 2, pp: 189-198.
10
Pirsaheb, M.; Fattahi, N.; Sharafi, K. and Ghaffari, H.R., 2017. Evaluation of abamectin, diazinon and chlorpyrifos pesticide residues in apple product of Mahabad region gardens: Iran in 2014. Food Chem. Vol. 231, pp: 148-155.
11
Salazar-Arredondo, E.; de Jesus Solis-Heredia, M.; Rojas-Garcia, E.; Hernandez-Ochoa, I. and Quintanilla Vega, B., 2008. Sperm chromatin alteration and DNA damage by methyl-parathion, chlorpyrifos and diazinon and their oxon metabolites in human spermatozoa. Reprod Toxicol. Vol. 25, No. 4, pp: 455-460.
12
Sarabia, L.; Maurer, I. and Bustos-Obregon, E., 2009. Melatonin prevents damage elicited by the organo phosphorous pesticide diazinon on mouse sperm DNA. Ecotoxicol Environ Saf. Vol. 72, No. 2, pp: 663-668.
13
Saraei, F.; Sadoughi, M.; Kaka, G.; Sadraie, S.H. and Foaddodini, M., 2016. Study of the Effects of Diazinon on Fetal Liver in BALB/c Mice. Iran Red Crescent Med J. Vol. 18, No. 4, e28076.
14
Slotkin, T.A.; Skavicus, S. and Seidler, F.J. 2017. Diazinon and parathion diverge in their effects on development of noradrenergic systems. Brain Res Bul. Vol. 130, pp: 268-273.
15
Talebi, A.R.; Khalili, M.A.; Vahidi, S.; Ghasemzadeh, J. and Tabibnejad, N., 2013. Sperm chromatin condensation, DNA integrity, and apoptosis in men with spinal cord injury." J Spinal Cord Med. Vol. 36, No. 2, pp: 140-146.
16
Tavilani, H.; Doosti, M. and Saeidi, H., 2005. Malondialdehyde levels in sperm and seminal plasma of asthenozoospermic and its relationship with semen parameters. Clin Chim Acta. Vol. 356, pp: 199-203.
17
Toman, R.; Hluchy, S.; Cabaj, M.; Massanyi, P.; Roychoudhury, S. and Tunegova, M., 2016. Effect of separate and combined exposure of selenium and diazinon on rat sperm motility by computer assisted semen analysis. J Trace Elem Med Biol. Vol. 38, pp: 144-149.
18
Torabi, E.; Talebi, K.; Pourbabaei, A. and Ahmadzadeh, M., 2017. Diazinon dissipation in pesticide-contaminated paddy soil: kinetic modeling and isolation of a degrading mixed bacterial culture. Environ Sci Pollut Res Int. Vol. 24, No. 4, pp: 4117-4133.
19
Trailovic, S.M.; Marjanovic, D.S.; Uzelac, T.V.; Milovanovic, M. and Trailovic, J.N., 2017. Two opposite dose-dependent effects of diazinon on the motor activity of the rat ileum. Res Vet Sci. Vol. 112, pp: 18-25.
20
Velki, M.; Di Paolo, C.; Nelles, J.; Seiler, T.B. and Hollert, H., 2017. Diuron and diazinon alter the behavior of zebrafish embryos and larvae in the absence of acute toxicity. Chemosphere. Vol. 180, pp: 65-76.
21
ORIGINAL_ARTICLE
مطالعه اثر داروی سیپروفلوکساسین (Ciprofloxacin) بر ساختار بافتی و آنزیم های کبدی در جنین موش سوری
سیپروفلوکساسین جزء آنتی بیوتیک هایی می باشد که از جفت عبور کرده و وارد مایع آمنیوتیک می شود. تحقیقات اندکی در مورد تأثیر سیپروفلوکساسین در ایجاد نارسایی تکامل کبدی جنین وجود دارد. ،لذا این مطالعه به منظور بررسی اثرات احتمالی مصرف این دارو در روزهای حساس بارداری بر روی رشد جنینی و تکامل بافت کبد در موش سوری انجام پذیرفت. دراین تحقیق از 40 سر موش سوری بالغ از نژاد Bulb/C استفاده شد. در گروه تیمار سیپروفلوکساسین با دوز 80 میلی گرم بر کیلوگرم بروش داخل صفاقی درروزهای 11،10،9 از آبستنی تزریق شد. نمونه های کبد جنینی بعد از جداسازی به روش هماتوکسیلین-ائوزین رنگ آمیزی شد و در نهایت زیر میکروسکپ نوری مورد بررسی هیستومورفومتری قرار گرفت. جهت انجام مطالعات سطح سرم فاکتورهای بیوشیمیایی کبدی بعد از اخذ خونگیری میزان آنزیم های آلانین آمینو ترانسفراز، آلکالین فسفاتاز وآسپارتات آمینو ترانسفراز بر اساس روش های استاندارد اندازه گیری شد. داده ها به صورت Mean±SEM بیان شده و برای تجزیه تحلیل داده ها روش آماری T-test، برای مقایسه وجود اختلاف بین گروه ها استفاده شد. در بررسی ریزبینی از بافت کبد در گروه تیمار شده، تغییرات وزیکولی درهسته های هپاتوسیت و هم چنین وقوع نکروز در برخی از سلول های کبدی دیده شد و تجمع بیش از حد چربی در سیتوپلاسم این سلول ها دیده شد. افزایش معنی دار در آنزیم هایALT و AST و تغییرات هیستوپاتولوژیک در ساختار کبد به دنبال مصرف این دارو به دست آمد که بیانگر صدمه جدی به بافت کبد و عملکرد آن می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_80264_55575ab3a09e58c5fe393b4fa99180bd.pdf
2018-09-23
79
84
بافت کبد
جنین
سیپروفلوکساسین
موش سوری
سینا
الهیاری
sajjadhejazi1@yahoo.com
1
دانشکده دامپزشکی، واحد علوم وحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
سید سجاد
حجازی
sajjadhejazi1@gmail.com
2
گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی، واحد تبریز، دانشگاه آزاد اسلامی، تبریز، ایران
LEAD_AUTHOR
آیتاللهی، ج.؛ قاسمی، ن.، تقیپور، ظهیر، ش.، هاشمی، ا. و بهجتی، م.، 1387. تجویز آنتی بیوتیک در حاملگی و شیردهی. مجله زنان مامایی و نازایی ایران. شماره 11، دوره 4، صفحات 49 تا 61..
1
شریعتزاده، م.؛ آذرنیا، م.، کاکا، غ.، شوق، ن. و صدرایی، ه.، 1392. بررسی اثرات تراتوژنیک عصاره زرشک آبی بر بافت کبد جنین موش سوری. مجله سلول و بافت. جلد4،شماره1، صفحات 63 تا 70.
2
حیدری، ا.؛ محسنی، م. و داداشی، ک.،1393. بررسی اثرات تزریق داخل صفاقی نانو مولیبدن بر میزان تغییرات سطح آنزیمهای کبدی در موش صحرائی بالغ. فیزیولوژی و تکوین جانوری. سال 8، شماره 28، صفحات 49 تا 54.
3
سلطانیان، م.؛ شریعتی، م. و شریفی، ا.، 1395. بررسی اثر حفاظتی ویتامین C بر بافت و عملکرد کبد نوزادان ماده موشهای صحرائی تیمار شده با استات سرب. فصلنامهزیست شناسیجانوری.سال8،شماره3، صفحات 35 تا 43.
4
نامجو، ع.؛ رفیعیان، م.، عزیزی، ش. و طالبیجونقانی، ع.، 1388. اثرات هیستوپاتولوژیک عصاره الکلی گل گلرنگ بر بافت مغز، کبد و کلیه در نوزاد موش سوری. مجله دانشگاه علوم پزشکی شهرکرد. ویژه نامه طب تکمیلی. صفحات 38 تا 45.
5
Asaga, T.; Ueki, M.; Chujo, K. and Taie, S., 2008. JTE-607, an inflammatory cytokine synthesis inhibitor, attenuates ischemia/reperfusion-induced renal injury by reducing neutrophil activation in rats. J Biosci Bioeng.
6
Vol. 106, pp: 22-26.
7
Braunbeck, T.; Storch, V. and Bresch, H., 1990. Species specific reaction of liver ultrastructure in zebra fish (Brachydanio rerio) and trout (Salmo gairdneri) after prolonged exposure to 4-chloroaniline. Arch Environ Contam Toxicol. Vol. 19, No. 3, pp: 405-418.
8
Barbosa, F.J.; Tanus-Santos, J.E.; Gerlach,R.F. and Parsons, P.J., 2005. A critical review of biomarkers used for monitoring human exposure to lead, advantages, limitations, and future needs. Environ Health Perspect. Vol. 113, No. 12, pp: 1669-1674.
9
Cullen, J.M., 2007. Liver, biliary system and exocrine pancreas. In: McGavin MD, Zachary JF, editors. Pathologic basis of veterinary disease 4th ed. London. pp: 403-406.
10
Christ-Crain, M.; Meier, C.; Puder, J.; Staub,J.; Huber, P. and Keller, U., 2004. Changes in liver function correlate with the improvement of lipid profile after restoration of euthyroidism in patients with subclinical hypothyroidism. Excil J. Vol. 3, pp: 1-9.
11
Choudhary, N.; Sharma, M.; Verma, P. and Joshi, S.C., 2003. Hepato and nephrotoxicity in rat exposed to endosulfan. J EnvironBiol. Vol. 24, No. 3, pp: 305-308.
12
Dalin, N.M. and Kristoffersson, R., 1974. Physiological effects of a sublethal concentration of inhaled phenol on the rat. Ann Zool Fenn. Vol. 11, pp:193-99.
13
Deichmann, W.B.; Kitzmiller, K.V. and Witherup, B.S., 1944. Phenol studies. VII. Chronic phenol poisoning, with special reference to the effects upon experimental animals of the inhalation of phenol vapor. Am J Clin Pathol. Vol. 14, pp: 273- 77.
14
Drusano, G.L.; Standiford, H.C.; Plaisance, K.; Forrest, A.; Leslie, J. and Caldwell, J., 1986. Absolute oral bio availability of ciprofloxacin. antimicrob agents Chemother. Vol. 30, No. 3, pp: 444-446.
15
Enginar, N. and Eroğlu, L., 1991.The effect of ofloxacin and ciprofloxacin on pentylenetetrazol-induced convulsions in mice. Pharm Biochem Behav. Vol. 39, No. 3, pp: 587-589.
16
Fazelipour, S.; Kiaei, S.B.; Tootian, Z. and Dashtnavard, H., 2008. Histomorphometric study of hepatocytes of mice after using heroin. Int J Pharmacol. Vol. 4, pp: 496-99.
17
Goldberg, D.M. and Watts, C., 1965. Serum enzyme changes as evidence of liver reaction to oral alcohol. Gastroenterology. Vol. 49, No. 3, pp: 256-261.
18
Luyi Monfared, A.; Tutian, Z. and Fazelpour, S., 2012. The study of changes in anatomical, histological, and biochemical activity of the liver among mice exposed to phenol. Med Sci J of IAUT. Vol. 22, No. 4, pp: 266-272.
19
Mycyk, M.; Hryhorcu, D. and Amitai, Y., 2005. Lead. In: Erickson TB, Ahrens WR, Aks S, Ling L, editors. Paediatric Toxicology: Diagnostic and management of the Poisoned Child. Mcgraw Hill Professional.
20
Parck, K.; O’Neill, S.; Vokonas, D.; Wright,O.; Coull, B.; Nie, H. and Hu, H., 2008. Air pollution and heart rate variability: modification by chronic lead exposure. Epidemiology. Vol. 19, No. 1, pp: 111-120.
21
Patel, J.M. and Bahadur, A., 2011. Histopathological manifestations of sublethal toxicity of copper ions in Catla catla. Am Eurasian J Toxicol Sci. Vol. 3, No. 1, pp: 1-5.
22
Sillanaukee, P., 1996. Laboratory markers of alcohol abuse. Alcohol Alcoholism. Vol. 31, No. 6, pp: 613- 616.
23
Schluter, G., 1989. Ciprofloxacin: toxicologic evaluation of additional safety data. Am J Med. Vol. 87, No. 5, pp: 37-39.
24
Xu, Q.; Cao, J.S. and Zhang, X.M., 2002. Liver-infiltrating T lymphocytes cause hepatocyte damage by releasing humoral factors via LFA-1/ICAM-1 interaction in immunological liver injury. Inflamm Res. Vol. 51, No. 1, pp: 44-50.
25
Yu, K.M., 1992. Relation Between Placental Morphometry and Fetal Growth. Vol. 27, No. 4, pp: 217-219.
26
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی غلظت کادمیوم، مس و روی در اندامهای مختلف موش مغان (Microtus socialis) دراستان کرمانشاه
جوندگان نسبت به آلودگی فلزات حساس بوده و بهدلیل شباهت بین الگوی توزیع فلزات در بافتهای بدن انسان و بافتهای بدن جوندگان میتوانند بهعنوان نمونه مطالعاتی مناسب، مورد بررسی قرارگیرند. هدف از این تحقیق بررسی میزان فلزات کادمیوم، مس و روی در اندامهای عضله، کبد، استخوان و کلیه موش مغان (Microtus socialis) دراستان کرمانشاه است. در این بررسی، 12 موش مغان (6 نر و 6 ماده) بهروش تلهشرمن در سال 1396 جمعآوری شد. میزان فلزاتمس، روی و کادمیوم با استفاده از دستگاه جذب اتمی مدل Phonix 986 اندازهگیری شد. نتایج نشان داد تفاوت معنیداری بین غلظت فلزات روی، مس و کادمیوم در اندامهای مختلف موش مغان وجود داشت (0/01>p). بیشترین وکمترین میزان فلز روی بهترتیب در بافت کبد (15/68 میکروگرم/ گرم وزن تر) و استخوان (5/38 میکروگرم/ گرم وزن تر) مشاهده شد. بیشترین میزان فلز مس در بافت کبد (13/31 میکروگرم/ گرم وزن تر) و کمترین میزان آن در عضله (4/67 میکروگرم/ گرم وزن تر) وجود داشت. بیشترین و کمترین غلظت کادمیوم بهترتیب در بافتهای کبد (2/36 میکروگرم/ گرم وزن تر) و استخوان (1/19 میکروگرم/ گرم وزن تر) مشاهده شد. غلظت فلزات روی در عضله و کلیه (0/01>p)، مس در عضله، کبد و استخوان و کادمیوم تنها در استخوان (0/05>p) بین جنس نر و ماده اختلاف معنیداری مشاهده شد. با مقایسه غلظت پسزمینه و میزان غلظتهای مورد بررسی فلزات در بافت کبد بیانگر این مطلب است که فلزات در محدوده پسزمینه قرار دارند و به حد بحرانی نرسیدهاند.
http://www.aejournal.ir/article_80294_da7a233443d9b87434147f86f76826bd.pdf
2018-09-23
85
90
آلودگی فلزات
جوندگان
موش مغان
کرمانشاه
هادی
تحسینی
haditahsini@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی و محیط زیست، دانشگاه کردستان، صندوق پستی: 5986144741
LEAD_AUTHOR
محسن
احمدپور
m_ahmadpour_en@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 15739-49138
AUTHOR
اسماعیلیساری، ع.، 1381. آلایندهها، بهداشت و استاندارد در محیطزیست، چاپ اول، انتشارات نقش مهر.
1
پیشگاهیفرد، ز.؛ قالیباف، م.ب.؛ حیدریفر، م.ر. و حیدری، ش.، 1390. بسترهای ژئوپلیتیکی قاچاق کالا و ارز با تأکید بر بازارچههای مرزی (استان کرمانشاه). پژوهشهای جغرافیای انسانی. دوره 46، شماره 3، صفحات 465 تا 484.
2
حمیدیان، ا.ح.؛ خزاعی، م.؛ علیزادهشعبانی، ا.؛ اشرافی، س.؛ میرجلیلی، ا. و اسمعیلی، ع.، 1394. ارزیابی غلظت فلزات در بافتهای مختلف جرد ایرانی با استفاده از روش آماری تجزیه به مؤلفههای اصلی. نشریه دامپزشکی. شماره 109، صفحات 10 تا 17.
3
خزاعی، م.؛ حمیدیان، ا.ح.؛ علیزادهشعبانی، ا.؛ اشرافی، س.؛ میرجلیلی، ع.ا. و اسمعیلی، ع.، 1394. بررسی میزان تجمع فلزات سنگین Zn،Cu وCr در بافت مو و کبد جرد ایرانMeriones persicu درۀ زرشک، یزد. نشریه محیط زیست طبیعی. دوره 68، شماره 4، صفحات 557 تا 549.
4
زرینتاب، م. و میرزایی، ر.، 1395. بررسی غلظت برخی از فلزات سنگین در اندامهای مختلف موش قهوهای بهعنوان گونه شاخص زیستی در شهرستان آران بیدگل استان اصفهان. مجله محیط زیست جانوری. سال 8، شماره 3، صفحات 9 تا 18.
5
سهرابی، د. و غلامی، م.ر.، 1387. بررسی اثرات مزمن فلز روی (کلرید روی) بر بافتهای کبد، کلیه و طحال در موش صحرایی نر بالغ. نوید نو. دوره 41، صفحات 34 تا 41.
6
موسوی، س.م.؛ اسماعیلیساری، ع. و ریاحیبختیاری، ع.ر.، 1385. تعیین میزان روی، مس، سرب و کادمیوم در بافتهای مختلف موش قهوهای و بررسی آلودگی فلزات سرب و کادمیوم در شهر نور. دانشور پزشکی. دوره 14، شماره 67، صفحات 49 تا 55.
7
مشروفه، ع.ر.؛ ریاحیبختیاری، ع.ر. و پورکاظمی، م.، 1391. بررسی میزان فلزات کادمیوم، نیکل، وانادیوم و روی در بافتهای مختلف فیل ماهی ازون برون و ریسک ناشی از مصرف بافت عضلانی آنها مربوط به حوزه جنوبی دریای خزر. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. دوره 22، شماره 96، صفحات 89 تا 96.
8
یونسیپور، ح.؛ نصرالهزادهساروی، ح. و ساداتیپور، س.م.ت.، 1393. بررسی تجمع زیستی فلزات سنگین ضروری (آهن، مس و روی) و نیمه ضروری (نیکل، کبالت و منگنز) در بافت خوراکی ماهی کپور (Cyprinus carpio) دریای خزر. نشریه توسعه آبزیپروری. دوره 1، شماره 8، صفحات 95 تا 106.
9
Beernaert, J.; Scheirs, J.; Leirs, H.; Blust, R. and Verhagen, R., 2007. Non destructive pollution exposure assessment by means of wood mice hair. Environ. Pollut. Vol. 145, pp: 443-451.
10
Bergeron, J.M. and Juliet, J., 1979. L'alimentationestivale du campagnoldeschamps, Microtus pennsylvanicus Ord. Canadian J of Zoology. Vol. 57, pp: 2028-2032. (In French).
11
Bla´zovics, A.; Abaza, M.; Sı´pos, P.; Szemtmiha´lyi, K.; Fehe´r, E. and Szila´gyi, M., 2002. Biochemical and morphological changes in liverand gallbladder bile of broiler chicken exposed to heavy metals (cadmium, lead, mercury). Trace Elementsand Electrolytes. Vol. 19, No. 1, pp: 42-47.
12
Boening, D.W., 2000. Ecological effects, transport, and fate of mercury: A general review. Chemosphere. Vol. 40, pp: 1335-1351.
13
Canli, M. and Furness, R.W., 1995. Toxicity of heavy metals dissolved in sea water and influences of sex and size on metal accumulation and tissue distribution in the Norway lobster Nephrops norvegicus. Mar. Environ. Res. Vol. 36, pp: 217-236.
14
Damek-Poprawa, M. and Sawicka-Kapusta, K., 2003. Damage to the liver, kidney, and testis with reference to burden of heavy metals in yellow-necked mice from areas around steelworks and zinc smelters in Poland. Toxicology. Vol. 36, pp: 1-10.
15
Damek-Poprawa, M. and Saicka-Kapusta, K., 2004. Histopathological changes in the liver, kidneys, and testes of bank voles environmentally exposed to heavy metal emissions from the steelworks and zinc smelter in Poland. Environmental research. Vol. 96, No. 1, pp: 72-78.
16
Filazi, A.; Baskaya, R. and Kum, C., 2003. Metal concentration in tissues of the Black Sea fish Mugil auratus from sinop-Icliman. Turkey. Human & Experimental Toxicology. www. hetjournal.com. Vol. 22, pp: 85-87.
17
Filistowicz, A.; Dobrzański, Z.; Przysiecki, P.; Nowicki, S. and Filistowicz, A., 2011.Concentration of heavy metals in hair andskin of silver and red foxes (Vulpes vulpes). Environmental monitoring and assessment. Vol. 182, No. 1-4, pp: 477-484.
18
Freedman, B., 1989. Environmental Ecology. The impact of pollution and other stresses on ecosystem structure and function. Academic press, London.
19
Gdula-Argasińska, J.; Appleton, J.; Sawicka-Kapusta, K. and Spence, B., 2004. Further investigation of the heavy metal content of the teeth of the bank vole as an exposure indicator of environmental pollution in Poland. Environmental Pollution. Vol. 131, No. 1, pp: 71-79.
20
Goyer, R.A., 1991. Toxic effects of metals. In: Amdur, M. O., Doul, J., Klaasen, C. D.(Eds), Casarette and Doull’s Toxicology. Pergamum Press, Oxford.
21
Haschek, W.M. and Rousseaux, C.G., 1998. Fundamentals of Toxicological Pathology. Academic Press, San Diego, California, USA.
22
Horai, S.; Watanabe, I.; Takada, H.; Iwamizu, Y.; Hayashi, T.; Tanabe, S. and Kuno, K., 2007. Trace element accumulations in 13 avian species collected from the Kanto area, Japan. Science of the Total Environment. Vol. 373, pp: 512-525.
23
Houserova, P.; Hedbavny, J.; Matejicek, D.; Kracmar, S.; Sitko, J. and Kuban, V., 2005. Determination of total mercury in muscle, intestines, liver and kidney tissues of cormorant (Phalacrocorax carbo), great crested grebe (Podiceps cristatus) Eurasian buzzard (Buteo buteo). Veterinarni Medicina Czech. Vol. 50, pp: 61-68.
24
Ieradi, L.A.; Cristaldi, M.; Mascanzoni, D.; Cardarelli, E.; Grossi, R. and Campanella, L., 1996. GeneticDamage in Urban Mice Exposed to Traffic Pollution.
25
Ma, W.C.; Denneman, W. and Faber, J., 1991. Hazardous exposure of ground living small mammals to cadmium and lead in contaminated terrestrial ecosystems. Archives of Environmental Contamination and Toxicology. Vol. 51, pp: 521- 566.
26
Marcheselli, M.; Sala, L. and Mauri, M., 2010. Bioaccumulation of PGEs and other traffic-related metals in populations of the small mammal Apodemussylvaticus. Chemosphere. Vol. 80, pp: 1247-1257.
27
Mugford, C.A. and Kedderis, G.L., 1998. Sex dependent metabolism of xenobiotics. Drug Metabolism Review.
28
Vol. 30, pp: 441-498.
29
Nowak, R.M., 1999. Walker’s Mammals of the World. Sixth ed. The Johns Hopkins University Press, Baltimore. ML.
30
Pereira, R.; Pereira, M.L.; Ribeiro, R. and Gonzales, F., 2006. Tissues and hair residuesand histopathology in wild rats (Rattus rattusL.) and Algerian mice (Muss pretus) from an abandoned mine area (Southeast Portugal). Environmental Pollution. Vol. 139, No. 3, pp: 561-575.
31
Rao, L.M. and Padmaja, G., 2000. Bioaccumulation of heavy metals in M. cyprinoids from the harbor waters of Visakhapatnam. Bulletin of Pure and Applied Sciences: Section E. Mathematics and Statistics. Vol. 19, pp: 77-85.
32
Sánchez-Chardi, A. and Nadal, J., 2007. Bioaccumulation of metals and effects oflandfill pollution in small mammals. Part I. The greater white-toothed shrew, Crocidura russula. Chemosphere. Vol. 68, pp: 703-711.
33
Sawicka-Kapusta, K.; Zakrzewska, M.; Kowalska, A.; Lenda, B. and Skrobacz, M., 1995. Heavy metal concentrations in small mammals from Borecka forest. Arch. Ochr.Środ. Vol. 3, pp: 229-234.
34
Schleich,C.E.;Beltrame,M.O.andAntenucci, C.D., 2010. Heavy metals accumulation in the subterranean rodent Ctenomy stalarum from areas with different risk of contamination. Folia Zoology. Vol. 59, pp: 108-114.
35
Tchounwou, P.B.; Yedjou, C.G.; Patlolla, A.K. and Sutton, D.J., 2012. Heavy metal toxicity and the environment. In Molecular, clinical and environmental toxicology. Springer Basel. pp: 133-164.
36
Talmage, S.S. and Walton, B.T., 1991. Small mammals as monitors of environmental contaminants. Reviews of Environ Contamination and Toxicol.Vol. 2, pp: 12-012.
37
Zamani,R.;Mahmoodi,A.;Esmaili-Sari,A.; Ghasempouri, S.M. and Savabieasfahani, M., 2009. Mercury in wetland birds of Iran and Iraq: contrasting resident moorhen, Gallinula chloropus, and migratory Common Teal, Anas crecca, life strategies. Bulletin of environmental contamination and toxicology. Vol. 82, pp: 450-453.
38
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی و تعیین تنوع گونهای پرندگان مرتع زی در مراتع منطقه حفاظت شده ارسباران
شناسایی و تعیین تنوع گونهای پرندگان مرتعزی در مراتع منطقه حفاظتشده ارسباران در بهار و تابستان 1395 با دوربین چشمی 10×40 زایس و تلسکوپ 15×60 با مشاهده مستقیم و نقطه شماری Point Count انجام شد. در این مطالعه 74 گونه پرنده مرتعزی متعلق به 20 تیره در منطقه شناسایی شد. تنوع گونهای با استفاده از نرمافزار Past تعیین شد. جمعیت پرندگان در طول 6 ماه 2967 قطعه بود که بیش ترین جمعیت در خردادماه 909 قطعه بود. شاخصهای زیستی تنوع گونهای مارگالف و منهینینک در فروردینماه به ترتیب 8/94 و 3/31 بیش ترین و کم ترین مقدار در مرداد به ترتیب 7/91 و 2/037 بود. بیش ترین غالبیت در شهریورماه با 0/118 و کم ترین مقدار غالبیت در خرداد برابر با 0/05 بود. تیره توکایان Turdidae با 12 گونه دارای بیش ترین تنوع و تیرههایFalconidae، Meropidae، Coracidae، Upopidae،Sturnidae ، Sittidae و Tetraonidae هر یک با یکگونه دارای کم ترین تنوع گونهای در منطقه را داشتند. در طول بهار و تابستان 1395 راسته گنجشکسانان با 94/92 در صد، راسته ماکیانیان با 4/77 درصد و راسته شکاریها شامل (قوشیان و شاهینیان) با 0/77 درصد ترکیب جمعیت پرندگان ارسباران را تشکیل داده بودند.
http://www.aejournal.ir/article_80635_5255a637df0f5190d953568fff873ee6.pdf
2018-09-23
91
100
پرندگان مرتع زی
تنوع گونهای
منطقه حفاظتشده ارسباران
بهروز
بهروزی راد
bbehrouzirad@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
اداره کل حفاظت محیطزیست آذربایجان شرقی. 1395. ارسباران منطقه حفاظت شده، گزارشات منتشر نشده.
1
بهروزی راد، ب.، 1383. بررسی جمعیت سیاه خروس در منطقه حفاظت شده ارسباران. سازمان حفاظت محیط زیست. گزارش منتشر نشده. 25 صفحه.
2
بهروزی راد، ب.، 1393. بررسی حیاتوحش محدوده معدن مس هفتچشمه در منطقه ارسباران، مهندسین مشاور کانی کاوان، گزارش منتشر نشده. 75 صفحه.
3
دفتر حقوقی و امور مجلس سازمان حفاظت محیط زیست. 1379. مجموعه قوانین و مقررات حفاظت محیط زیست ایران، انتشارات سازمان حفاظت محیط زیست. صفحات 198 تا 209.
4
Azpiroz, A.B.; Isacch, J.P.; Dias, R.A.; Di Giacomo, A.S.; Fontana, C.S. and Palarea, C.M., 2012. Ecology and conservation of grassland birds in southeastern South America: a review. Journal of field ornithology. Vol. 83, pp: 217-246.
5
Bock, C.E., 2002. Birds and bovines: effects of livestock grazing on birds in the West in G. Wuerthner and M. Matteson (eds.). Welfare Ranching: The subsidized destruction of the American West Island Press, Covelo, CA.
6
Brennan, L.A. And Kovalevsky, W.P., 2005. North American grassland birds: An unfolding conservation crisis? Journal of Wildlife Management. Vol. 69, No. 1, pp: 1-13.
7
Báldi, A.; Batáry, P. and Kleijn, D., 2013. Effects of grazing and biogeographic regions on grassland biodiversity in Hungary analyzing assemblages of 1200 species. Agricultural Ecosystem Environment. Vol. 166, pp: 28-34.
8
Batáry, P.; Báldi, A. and Erdos, S., 2007. Grassland versus non-grassland bird abundance and diversity in managed grasslands: local, landscape & regional scale effects. Biodiversity conservation. Vol. 16, No. 4, pp: 871-881.
9
Bibby, C.J.; Burgess, N.D. and Hill, D.A., 1992. Bird census techniques. London, Academic Press. 302 p.
10
Cody, M.L., 1968. On the methods of resource division in grassland bird communities. American Naturalist. Vol. 102, pp: 107-147.
11
Coppedge, B.R.; Fuhlendorf, S.D.; Harrell, W.C. and Engle, D.M., 2008. Avian community response to vegetation and structural features in grasslands managed with fire and grazing. Biological Conservation. Vol. 141, pp: 1196-1203.
12
Corina, J.R.; William, E.J. and Kimberly, W.A., 2008. Grassland bird responses to land management in the largest remaining tall grass prairie. Conservation Biology. Vol. 23, No. 2, pp: 420-432.
13
Dep. of Natural Resources of Gilan Province. 2016. Available at:http://www.gilan.frw.org.ir/00/Fa/StaticPages /Page.aspx?tid=2237.
14
Dep of Froest and renglands of Iran. 2014. Available at:http://www.irna.ir/fa/News/2000085915.
15
Evans, M.I., 1994. Important Bird Areas in the Middle east, Published by Birdlife International. pp: 65-158.
16
Evans, D.M.; Redpath,S.M.; Elston,D.A.;Evans,S.A.; Mitchell, R.J. and Dennis, P., 2006. To graze or not to graze? Sheep, voles, forestry and nature conservation in the British uplands. Journal of Applied Ecology. Vol. 43, No. 3, pp: 499-505.
17
Dias, R.A.; Bastazini, V.A.G. and Gianuca, A.T., 2014. Bird-habitat associations in coastal rangelands of southern Brazil. Iheringia, Sér. Zool. Vol. 104, No. 2, pp: 201-215.
18
Fisher, R.J. and Davis, S.K., 2010. From Wiens to Robel: a review of grassland-bird habitat selection. Journal of Wildlife Management. Vol. 74, pp: 265-273.
19
Gennet, S.; Spotswood, E.; Hammond, M. and Bartolome, W.J., 2017. Livestock grazing supports native plants and songbirds in a California annual grassland. PLoS one 12(6): e0176367. Available at: https://doi.org/10.1371/journal. pone. 0176367.
20
Hammer, H.Ø., 2012. Paleontological Statistics, Version 3.12, natural History Museum, University of Oslo. 250 p.
21
IUCN. 2014. Threatened species of the world. 2015. IUCN, Gland. www.iucn.org.
22
Khalilpour, S.A., 2014. Tasnim News, Available at https://www.tasnimnews.com/fa/news/1393/06/06/475331/.
23
Nally, M.R.; Ellis, M. and Barrett, G., 2004. Avian biodiversity monitoring in Australian rangelands. Austral Ecology. Vol. 29, No. 1, pp: 93-99.
24
Nelson, E.; Gray, M. and Evans, J.R., 2011. Finding solutions for bird restoration and livestock management: Comparing grazing exclusion levels. Journalof Ecological Applications. Vol. 21, No. 2, pp: 547-554.
25
Porter, R.F.; Christensen, S. and Schiermacker, H.P., 2005. A Field guide to the birds of the Middle East. First published 1996.reprinted 2005. Published by A and C Black Publisher LTD. pp: 321-722.
26
Reino, L.; Porto, M.; Morgado, R.; Moreira, F.; Fabião, A. and Santana, J., 2010. Effects of changed grazing regimes and habitat fragmentation on Mediterranean grassland birds. AgricultureEcosystems & Environment. Vol. 138, No. 1-2, pp: 27-34.
27
Reynolds R.T.; Scott, M.J. and Nussbaum, R.A., 1980. A variable circular Plot-Method for estimating bird numbers. Condor. Vol. 82, No. 3, pp: 309-313.
28
Ralph, J.C.; Geupel, G.; Pyle, P.; Martin, T.E. and Sante, D.E., 2010. Handbook of field methods for monitoring landbirds in service USF. Edithor: Pacific Southwest Research Station. 480 p.
29
Sardary, M., 2010. Available at: http://www.irna.ir/fa/ News/2000085915.
30
Toombs, T.P.; Justin, D.D.; David, J.A.; Bryce, K. and Seth, G., 2010. Managing for biodiversity and Livestock. Rangelands. Vol. 32, No. 3, pp: 10-15.
31
Whittaker, R.H., 1953. Dominance and diversity in land plant communities. Science. Vol. 147, pp: 250- 260.
32
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی جمعیت عقاب های صحرایی (Aquila nipalensis) و شاهی (Aquila heliaca) زمستان گذران در اطراف کشتارگاه و سایت زباله شهر یاسوج از پاییز 1394 تا زمستان 1395
کشتارگاه و سایت زباله شهر یاسوج در مجاورت یکدیگر و در 12 کیلومتری جنوب شهر یاسوج قرار دارند. در طی دو سال (1394 و 1395)، از اوایل آبان ماه تا اواخر اسفند، پرندگان شکاری این منطقه مورد شمارش و بررسی قرار گرفت. نتایج این بررسیها نشان داد که در پاییز و زمستان سال 1394 حدود 130-120 عدد پرنده شکاری از خانواده عقابها و در سال 1395 حدود 125-115 عدد از همین خانواده در سایت زباله و کشتارگاه یاسوج حضور داشتند. از این تعداد در سال 1394، 84 عدد عقاب صحرایی و شش عدد عقاب شاهی و در سال 1395، 79 عدد عقاب صحرایی و 10 عدد عقاب شاهی شمارش گردید. در سال اول، 19/05% عقابهای صحرایی، بالغ بودند و 33/33% آنها 5-4 ساله و 47/62% آنها 3-2 ساله بودند. همچنین 83/33% از عقابهای شاهی، نابالغ بودند. در سال دوم، 21/53% عقابهای صحرایی، بالغ بودند و 36/70% آنها 5-4 ساله و 41/77% آنها 3-2 ساله بودند. در مورد عقابهای شاهی نیز در سال دوم، باز هم جمعیت افراد بالغ بسیار کمتر بود (20% کل جمعیت عقابهای شاهی)، ولی اغلب افراد شمارش شده را نابالغها تشکیل میدادند. در طی دو سال مطالعه نیز، 20/3% عقابهای صحرایی بررسی شده، بالغ و بقیه نابالغ بودند و در مورد عقاب شاهی نیز، 18/43% جمعیت، بالغ بودند. همچنین اوج زمان حضور عقابهای مهاجر در این منطقه دی و بهمن ماه بوده است. در مطالعه حاضر عقاب شاهی جمعیت بسیار کمتری نسبت به عقاب صحرایی داشت.
http://www.aejournal.ir/article_80661_db65f3a51a2a214625132c4caa3df811.pdf
2018-09-23
101
106
عقاب صحرایی
عقاب شاهی
هرم سنی
جمعیت
آریا
شفائی پور
shafaei@yu.ac.ir
1
گروه زیست شناسی، دانشگاه یاسوج، کد پستی: 7591874934
LEAD_AUTHOR
بهزاد
فتحی نیا
bfathinia@gmail.com
2
گروه زیست شناسی، دانشگاه یاسوج، کد پستی: 7591874934
AUTHOR
فاطمه
خانجانی
farzanehkhanjani@yahoo.com
3
اداره کل حفاظت محیط زیست استان گیلان
AUTHOR
Al Hasani, I.K.; Azar, J.F.; Nishimura, K.; Amr, Z.S. and Katzner, T.E., 2012. Distribution, diet and winter ecology of the Imperial Eagle (Aquila heliaca) in Jordan. Vertebrate Zoology. Vol. 62, No. 2, pp: 273-280.
1
Andrew, W.T., 2002. Raptor Migration at Hoang Lien Nature Reserve, Northern Vietnam. Forktail. Vol. 18,
2
pp: 45-48.
3
Besten, D.W.J., 2004. Migration of Steppe Eagles (Aquila nipalensis) and other raptors along the Himalayas past Dharamsala, India, in autumn 2001 and spring 2002. Forktail. Vol. 20, pp: 9-13.
4
BirdLife International. 2016. Aquila heliaca. The IUCN Red List of Threatened Species 2016: e.T22696048
5
A90410809.
6
Bragin, E. and Katzner, T., 2004. Population trends and nesting success of Imperial Eagle, Golden Eagle and White-tailed Sea Eagle in northwest Kazakhstan in 1990-2002. In: ChanceLLor, R. D. & B.U. MeyBurg (eds.), Raptors World Wide: Proceedings of the WWGBP – 6th World Conference on Birds of Prey and Owls. Budapest, Hungary. pp: 551-556.
7
Decandido, R.; Allen, D. and Bildstein, K.L., 2001. The migration of Steppe eagles (Aquila nipalensis) and other raptors in central Nepal, autumn 1999. Journal of Raptor Researc. Vol. 35, No. 1, pp: 35-39.
8
Demerdzhiev, D.; Stoychev, S.; Terziev, N. and Angelo, I., 2011. Status of the Eastern Imperial Eagle (Aquila heliaca) in the European part of Turkey. Acta Zoologica Bulgarica. Vol. 3, pp: 87-89.
9
Demerdzhiev, D.; Horváth, M.; Kovács, A.; Stoychev, S. and Karyakin, I., 2011. Status and population trend of the Eastern Imperial Eagle (Aquila heliaca) in Europe in the period 2000-2011. Acta Zoologica Bulgarica. Vol. 3, pp: 5-14.
10
Ellis, D.H.; Moon, S.L. and Robinson, J.W., 2001. Annual movements of a Steppe Eagle (Aquila nipalensis) summering in Mongolia and wintering in Tibet. Journal of Bombay Natural History Society. Vol. 98, No. 3, pp: 335-340.
11
Ferrer, M., 2001. The Spanish Imperial Eagle. Lynx Edicions, Barcelona, Spain.
12
Ferrer, M.; Penteriani, V.; Balbontin, J. and Pandolfi, M., 2003. The proportion of immature breeders as a reliable early warning signal of population decline: evidence from the Spanish Imperial Eagle of Doñana. Biological Conservation. Vol. 114, pp: 463-466.
13
Forsman, D., 2012. The Raptors of Europe and the Middle East, A Handbook of Field Identification. Christopher Helm, London, UK.
14
Fregurson Lees and Christie. 2001. Raptors of the world. Christopher Helm 417-420, ISBN 978-0-691-12684-5.
15
Globalraptors.org.Steppe Eagle Aquila nipalensis. Global Raptor Information Network.
16
Khatri, P.C., 2015. Winter migration of Steppe eagles (Aquila nipalensis) at Jorbeer, Bikaner. International Journal of Innovative Research and Review. Vol. 3, No. 1, pp: 1-5.
17
Mayuri, P.H., 2014. Eagles fall prey to vulture-killing chemical. Pune Mirror. Retrieved 28 May 2014.
18
Meyburg, B.U.; Meyburg, C. and Paillat, P., 2012. Steppe Eagle migration strategies – revealed by satellite telemetry. British Birds. Vol. 105, pp: 506-551.
19
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه اثرات لانه های تخم گذاری ماشینی و مرسوم بر کیفیت تخم های مرغ مادر گوشتی
به منظور مقایسه اثرات لانه های تخم گذاری اتوماتیک و مرسوم بر برخی متغیرهای مربوط به کیفیت تخم در مزارع مرغ مادر گوشتی، از یک واحد پرورش مرغ مادر با پنج سالن مجهز به لانه های تخم گذاری اتوماتیک و پنج سالن با لانه های مرسوم دستی استفاده شد. فراوانی هفتگی تخم های ترک دار، کثیف، ضایعاتی، بدشکل، دوزرده و قابل جوجه کشی طی یک دوره تولید (34 هفته) در سالن ها اندازه گیری شد. مشاهدات درصد هفتگی هر متغیر با استفاده از مدلی آماری شامل اثرات تصادفی سالن و هفته تخم گذاری در رویه mixed نرم افزار SAS تجزیه و تحلیل شدند، و میانگین درصد متغیرهای دو گروه از سالن ها مقایسه شدند.در سالن های با لانه ماشینی اتوماتیک، فراوانی تخم های بدشکل کم تر و فراوانی تخم های کثیف و تخم های ضایعاتی بیش تر بود (p<0/01). هم چنین درصد تخم های قابل جوجه کشی در سالن های مجهز به لانه های اتوماتیک بیش تر بود (p<0/01). درصد تخم های ترک دار و تخم های دو زرده تحت تاثیر نوع لانه ها نبود (p>0/01). نتایج نشان داد استفاده از لانه های ماشینی اتوماتیک در مزارع پرورش مرغ مادر گوشتی و مدیریت صحیح آن می تواند موجب بهبود کیفیت تخم مرغ و درصد تخم های قابل جوجه کشی شود.
http://www.aejournal.ir/article_80679_02126ab81bebe5a8373002f2f3b7a2f3.pdf
2018-09-25
107
112
لانه تخمگذاری
مرغ مادر گوشتی
کیفیت تخم مرغ
تخم قابل جوجه کشی
روح اله
عبداله پور
rohullah1979a@gmail.com
1
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد قائم شهر، قائم شهر، ایران
LEAD_AUTHOR
وحید
رضایی پور
vrezaeipour@gmail.com
2
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد قائم شهر، قائم شهر، ایران
AUTHOR
حامد
کریمی زاده
karimizadeh_hamed@yahoo.com
3
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد قائم شهر، قائم شهر، ایران
AUTHOR
مجتبی
زمانی
zamani_tb@yahoo.com
4
گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد قائم شهر، قائم شهر، ایران
AUTHOR
Appleby, M.C., 1984. Factors affecting floor laying by domestic hens: a review. World's Poultry Science Journal. Vol. 40, No. 3, pp: 241-249.
1
Barnett, D.M.; Kumpula, B.L.; Petryk, R.L.; Robinson, N.A.; Renema, R.A. and Robinson, F.E., 2004. Hatchability and early chick growth potential of broiler breeder eggs with hairline cracks. The Journal of Applied Poultry Research. Vol. 13, No. 1, pp: 65-70.
2
Bartolo-Guerrero, A.; Landín-Grandvallet, L.A. and Villagómez-Cortés, J.A., 2015. Effect of Automatic Nests versus Conventional Nests on Laying Performance of Commercial Hens in Veracruz, Mexico, Journal of Applied Life Sciences International. Vol. 3, No. 3, pp: 114-121.
3
Belali, H. and Esfahani, S.J., 2014. Application of data envelopment analysis to measure efficiency in poultry farms (case study in South Khorasan). J of Agricultural Economics and Development. Vol. 28, No. 1, pp: 45-54. (In Farsi)
4
Brake, J., 1998. Equipment design for breeding flocks. Poultry science. Vol. 77, No. 12, pp: 1833-1841.
5
Britton, W.M., 1977. Shell membranes of eggs differing in shell quality from young and old hens. Poultry Science. Vol. 56, No. 2, pp: 647-653.
6
Decuypere, E.; Bruggeman, V.; Everaert, N.; Li, Y.; Boonen, R.; De Tavernier, J.; Janssens, S. and Buys, N., 2010. The Broiler Breeder Paradox: ethical, genetic and physiological perspectives, and suggestions for solutions. British poultry science. Vol. 51, No. 5, pp: 569-579.
7
De Jong, I.C.; Swalander, M.; Sandilands, V. and Hocking, P., 2012. Housing and management of broiler breeders and turkey breeders. In: Proceedings of the 30th Poultry Science Symposium, University of Strathclyde, Glasgow, Scotland, 2011. pp: 225-249.
8
Dhawale, A. and Nagpur, N.H., 2008. Abnormal eggs cause subnormal profits. World Poult. Vol. 24, pp: 20-23.
9
Estevez, I., 2009. Behaviour and environmental enrichment in broiler breeders. In B.M. Freeman (Ed.), Biology of breeding poultry. CABI, Wallingford, UK. pp: 261-283.
10
Glatz, P., 2013. Housing and management of breeders. In PoultryDevelopment Review, FAO. pp: 37-38.
11
Hunton, P., 2005. Research on eggshell structure and quality: an historical overview. Revista Brasileira de Ciência Avícola. Vol. 7, No. 2, pp: 67-71.
12
Hocking, P.M., 2009. Feed restriction. In P.M. Hocking (Ed.) Biology of breeding poultry. CABI. pp: 307-330.
13
Holt, P.S.; Davies, R.H.; Dewulf, J.; Gast, R.K.; Huwe, J.K.; Jones, D.R.; Waltman, D. and Willian, K.R., 2011. The impact of different housing systems on egg safety and quality. Poultry science. Vol. 90, No. 1, pp: 251-262.
14
King’ori, A.M., 2012. Egg quality defects: types, causes and occurrence: a review. Journal of Animal Production Advances. Vol. 2, No. 8, pp: 350-357.
15
Kjaer, J.B. and Mench, J.A., 2003. Behaviour problems associated with selection for increased production. In W.M. Muir & S.E. Aggrey (Ed.), Poultry Genetics, Breeding and Biotechnology. CABI. pp: 67-82.
16
Ledvinka, Z.; Zita, L. and Klesalová, L., 2012. Egg quality and some factors influencing it: a review. Scientia Agriculturae Bohemica. Vol. 43, No. 1, pp: 46-52.
17
Leeson, S. and Summers, J.D., 2010. Broiler breederproduction. Nottingham University Press.
18
Lentfer, T.L.; Gebhardt-Henrich, S.G.; Fröhlich, E.K. and von Borell, E., 2011. Influence of nest site on the behaviour of laying hens. Applied Animal Behaviour Science. Vol. 135, No. 1, pp: 70-77.
19
Lentfer, T.L.; Gebhardt-Henrich, S.G.; Fröhlich, E.K.F. and von Borell, E., 2013. Nest use is influenced by the positions of nests and drinkers in aviaries. Poultry science. Vol. 92, No. 6, pp: 1433-1442.
20
Mench, J.A.; Sumner, D.A. and Rosen-Molina, J.T., 2011. Sustainability of egg production in the United States-The policy and market context. Poul sci. Vol. 90, pp: 229-240.
21
Ringgenberg, N.; Fröhlich, E.K.; Harlander-Matauschek, A.; Würbel, H. and Roth, B.A., 2014. Does nest size matter to laying hens? Applied Animal Behaviour Science. Vol. 155, pp: 66-73.
22
Sengor, E.; Yardimci, M.; Cetingul, S.; Bayram, I.; Sahin, H. and Dogan, I., 2007. Short Communication Effects of short chain fatty acid supplementation on performance and egg characteristics of old breeder hens. South African Journal of Animal Science. Vol. 37, No. 3, pp: 158-163.
23
Stämpfli, K.; Buchwalder, T.; Fröhlich, E.K.F. and Roth, B.A., 2012. Influence of front curtain design on nest choice by laying hens. British poultry science. Vol. 53, pp: 553-560.
24
Trampel, D.W.; Frank, M. and Evans, K., 2013. Broiler Industry Manual. FAD PReP.
25
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی برخی صفات زیستی Natrix tessellate (Ophidia: Colubridae) جنس نر در شهرستان ساری استان مازندران
Natrix tessellata یک گونه وابسته به آب است که زندگی بسیاری از آن ها در نزدیکی نهرهایی که غنی از ماهی هستند کشیده شده است. در این مطالعه که از 15 فروردین تا 15 آبان 1391 روی جمعیتهای شهرستان ساری در استان مازندران انجام شد، تعداد 57 نمونه مار نر از چهار ایستگاه تالاب پرورش ماهیﺁبندانکش، پارک جنگلی زارع، رودخانه تجن و شالیزارهای اطراف ساری به منظور مطالعات تولیدمثلی، رفتارشناسی، بررسی صفات ریختی متریک و مریستیک در گشتهای روزانه و با دست جمعآوری شدند. نمونهها از ارتفاع 30 متری از سطح دریا در شالیزارهای برنج تا ارتفاع 700 متری در منطقه پارک جنگلی زارع مشاهده شدند. نتایج تحقیق حاضر نشان داد که طول بدن آن ها بین 34 تا 68 سانتیمتر، طول دم آن ها بین 11 تا 16 سانتیمتر و در صفات مریستیک تعداد فلسهای جلو چشمی 2 یا 3 عدد، 3 یا 4 فلس عقب چشمی، لب بالا دارای 8 و لب پایین 9 یا 10 فلس، فلسهای شکمی 169 تا 183 عدد، زیر دمی 60 تا 78 عدد و فلسهای پشتی در تمام نمونهها 19 عدد میباشد. زمان فعالیت این گونه در منطقه مورد مطالعه در فصل بهار از ساعت 9 صبح تا 16 عصر میباشد اما در فصل تابستان از ساعت 8 تا 13 و در بعد از ظهر از ساعت 17 تا 20 میباشد. هم چنین در این تحقیق فعالیت شبانهای از این مار مشاهده نشد. با شروع اسپرماتوژنز در اواسط خرداد، تعداد اسپرمها رفته رفته افزایش یافته و در اواسط مرداد و شهریور به حداکثر تعداد میرسد.
http://www.aejournal.ir/article_80692_b762819ccebf4673b290d80ba1e562f9.pdf
2018-09-23
113
120
مار چلیپر نر
ریخت شناسی
تولیدمثل
شالیزارهای برنج
پارک جنگلی زارع
ساری
رضا
بابائی سواسری
r_babaei_s@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد دامغان، دامغان، ایران
LEAD_AUTHOR
عبدالحسین
شیروی
shiravi738@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد دامغان، دامغان، ایران
AUTHOR
ویدا
حجتی
vida.hojati@gmail.com
3
گروه زیست شناسی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد دامغان، دامغان، ایران
AUTHOR
فرزانپی، ر.، 1369. مار شناخت. مرکز نشر دانشگاهی، چاپ اول. 284 صفحه.
1
لطیفی، م.، 1379. مارهای ایران. انتشارات سازمان حفاظت از محیط زیست. 478 صفحه.
2
Ajtić, R.; Tomović, L.J.; Sterijovski, B.; Crnobrnja Isalović, J.; Đorđević, S.; Đurakić, M.; Golubović, A.; Simović, A.; Arsovski, D.; Anđelković, M.; Krstić, M.; Šukalo, G.; Gvozdenović, S.; Aïdam, A.; Micheli, C.L.; Ballouard, J.M. and Bonnet, X., 2013. Unexpected life history traits in a very densepopulation of Dice snakes. A Journal of Comparative Zoology. pp: 350-358.
3
Ahmadzadeh, F.; Mebert, K.; Ataei, S.; Rezazadeh, E.; Gholi, L.A and Bohme, W., 2011. Ecological and Biological Comparison of Three Populations of the Dice Snake (Natrix tessellata) from the Southern Caspian Sea Coast, Iran. Mertensiella. Vol. 18, pp: 403-413.
4
Bahael Din, S., 2011. Distribution and recent range extension of Natrix tessellata in Egypt. Mertensiella. Vol. 18, pp: 401-402.
5
Capula, M.; Filippi, E.; Rugiero, L. and Luiselli, L., 2011. Dietary, Thermal and Reproductive Ecology of Natrix tessellata in Central Italy: A Synthesis. Mertensiella. Vol. 18, pp: 147-153.
6
Carlsson, M.; Karvemo, S.; Tudor, M.; Sloboda, M.; Mihalca, A.D.; Ghira, I.; Bel, L. and Modry, D., 2011. Monitoring a large population of dice snakes at Lake Sinoe in Dobrogea, Romania. Mertensiella. Vol. 18, pp: 237-244.
7
Dincaslan, U.E.; Arikan, H.; Uğurtaş, İ.H. and Mebert, K., 2011. Morphology and Blood Proteins of Dice Snakes from Western Turkey. Mertensiella. Vol. 18, pp: 370-382.
8
Faghiri, A.; Shiravi, A.; Hojati, V. and Kami, H.G., 2011. Observations on the spermatogenic cycle of the grass snake, Natrix natrix (Serpentes: Colubridae) in northern Iran. Asian Herpetological Research.Vol. 2, pp: 55-59.
9
Gruschwitz, M.; Lenz, S.; Mebert, K. and Laňka,V., 1999. Natrix tessellata (Laurenti, 1768) Wurfelnatter. In: Bohme, W (Ed.): Handbuch der Reptilien und Amphibien Europas, Wiesbaden, Germany. Vol. 3, pp: 581-664.
10
Guicking, D.; Joger, U. and Wink, M., 2009. Cryptic diversity in a Eurasian water snake (Natrix tessellata, Serpentes: Colubridae): Evidence from mitochondrial sequence data and nuclear. ISSR-PCR, fingerprinting. Organisms. Diversity and Evolution. Vol. 9, pp: 201-214.
11
Guicking, D.; Lawson, R.; Joger, U. and Wink, M., 2006. Evolution and phylogeny of the genus Natrix (Serpentes: Colubridae). Biological Journal of the Linnean Society. Vol. 87, pp: 127-143.
12
Hojati, V.; Faghiri, A. and Shiravi, A., 2013. Diet of the Grass Snake, Natrix natrix (Linnaeus, 1758) (Serpentes: Colubridae), innorthern Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 55, pp: 132-134.
13
Liu, Y.; Mebert, K. and Shi, L., 2011. Notes on Distribution and Morphology of the Dice Snake (Natrix tessellata) in China. Mertensiella. Vol. 18, pp: 430-436.
14
Mattison, C., 1999. Snakes. Harper Collins publisbers 256 p.
15
Mebert, K., 2011. Geographic variation of morphological characters in the dice snake Natrix tessellata (Laurenti 1768) Mertensiella. Vol. 18, pp: 11-19.
16
Mebert, K.; Trapp, B.; Kreiner, G.; Billing, H.; Speybroeck, J. and Henggeler, M., 2011. Nocturnal Activity in Natrix tessellata, a Neglected Aspect of its Behavioral Repetoire.Mertensiella. Vol. 18, pp: 234-236.
17
Neumann, C. and Mebert, K., 2011. Migration Behavior of Endangered Dice Snakes (Natrix tessellata) at the River Nahe, Germany.Mertensiella. Vol. 18, pp: 39-48.
18
Rajabizadeh, M.; Javanmardi, S.; Rastegar-Pouyani, N.; Karamiani, R.; Yousefi, M.; Salehi, H.; Joger, U.; Mebert, K.; Esmaeili, H.; Parsa, H.; Kami, H.G. and Rastegar-Pouyani, N., 2011. Geographic Variation, Distribution, and Habitat of Natrix tessellata in Iran. Mertensiella. Vol. 18, pp: 414-429.
19
Strugariu, A.; Gherghel, I.; Ghira, I.; Covaciu, S.; Marcov, D. and Mebert, K., 2011. Distribution, Habitat Preferences and Conservation of the Dice Snake (Natrix tessellata) in Romania. Mertensiella. Vol. 18, pp: 272-287.
20
Trobisch-Glaser, A. and Trobisch, D., 2001. Ein Mauerblumchen in der Terraristik: Die Wurfelnatter Natrix tessellata (Laurenti, 1768). Elaphe. Vol. 9, pp: 17-24.
21
Tuniyev, B.; Tuniyev, S.; Kirschey, T. and Mebert, K., 2011. Notes on the dice snake, Natrix tessellata, from the Caucasian Isthmus. Mertensiella. Vol. 18, pp: 343-335.
22
Wang, G.Y.; Qi, W.D.; Ma, M.; Wang, H. and Lei, J.H., 1987. Observations on the population ecology of Natrix tessellata. Arid Zone Research. Vol. 4, pp: 35-40 (in Chinese).
23
Werner, Y. and Shapira, T., 2011. A brief review of morphological variation in Natrix tessellata in Israel between sides, among individuals, between sexes, and among regions. Turk J Zool. Vol. 35, pp: 451-466.
24
Žagar, A.; Krofel, M.; Govedič, M. and Mebert, K., 2011. Distribution and Habitat Use of Dice Snakes (Natrix tessellata) in Slovenia. Mertensiella. Vol. 18, pp: 207-216.
25
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی مقدماتی فون سوسماران منطقه حفاظت شده سریشا – گوجی از استان خراسان رضوی، شمال شرقی ایران
منطقه حفاظت شده سریشا-گوجی با وسعت تقریبی 100 کیلومتر مربع در شمال شهرستان تربت حیدریه از استان خراسان رضوی واقع شده است. حداقل ارتفاع آن از سطح دریا 1482 متر و حداکثر ارتفاع آن 2522 متر میباشد. این مطالعه میدانی، در بهار و تابستان سال 1391 صورت پذیرفت و طی نمونه برداری به صورت پیمایشی فون سوسماران آن مورد شناسایی قرار گرفت. در مجموع 75 نمونه جمع آوری گردید که پس از انتقال به آزمایشگاه با استفاده از کلیدهای شناسایی معتبر و با اندازه گیری صفات متریک و مریستیک، مورد بررسی قرار گرفتند. گونه های شناسایی شده عبارتنداز: گونه های Paralaudakia caucasia، Paralaudakia microlepis، Paralaudakia erythrogastra، Trapelus agilis و Trapelus megalonyx از خانواده Agamidae؛ گونه Cyrtopodion scabrum از خانواده Gekkonidae؛ گونه های Eremias persica، Eremias fasciata، Mesalina watsonana از خانواده Lacertidae؛ و گونه Eumeces schneiderii princeps از خانواده Scincidae. بیش ترین فراوانی مربوط به گونه Paralaudakia caucasia می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_80783_bbc7e947cf01b61ffa70e7b9abd3193a.pdf
2018-09-23
121
132
سریشا گوجی
فون
سوسماران
صفات متریک و مریستیک
سمیه
اسدیان نارنجی
assadiansomayeh@hotmail.com
1
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تنکابن، تنکابن، ایران
LEAD_AUTHOR
زهرا
ابریشمی
abrishamizahra@yahoo.com
2
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تنکابن، تنکابن، ایران
AUTHOR
حمیدرضا
جمالزاده
hamidreza_jamalzadeh@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد تنکابن، تنکابن، ایران
AUTHOR
پارسا، ح.، ورستگارپویانی، ن.، 1388. سیستماتیک و پراکندگی جغرافیائی سوسماران استان کهگیلویه و بویر احمد. مجله علوم دانشگاه تهران. شماره 35، صفحات 17 تا 29.
1
رستگارپویانی، ن.، 1386. راهنمای صحرایی خزندگان ایران. جلد اول. سوسماران. چاپ دوم. انتشارات دانشگاه رازی. 268 صفحه.
2
ریگی، ع. و کمی، ح.ق.، 1394. مطالعه مقدماتی دو گونه Eremias persica و Eremias fasciata در سیستان. دومین کنگره ملی زیست شناسی و علوم طبیعی ایران.
3
ضیاءالحق، غ.، 1374. بیوسیستماتیک مارمولکهای پارک ملی تندور. پایاننامه کارشناسیارشد. دانشگاه تهران.
4
خادمی، ع.، 1384. بیوسیستماتیک مارمولکهای منطقه نیشابور. پایاننامه کارشناسیارشد. دانشگاه شهید بهشتی. 132 صفحه.
5
قارزی، الف.، 1370. بیوسیستماتیک سوسماران شمال سبزوار. پایاننامه کارشناسیارشد. دانشگاه تهران. 192 صفحه.
6
قائمیطلب، و. و کمی، ح.ق.، 1395. تنوع زیستی سوسمارهای منطقه تربت حیدریه در استان خراسان رضوی. مجله زیست شناسی جانوری تجربی. شماره 2، صفحات 53 تا66.
7
عقیلی، ح.، 1386. بررسی فونستیک مارمولکهای خراسان رضوی، منطقه فریمان. پایاننامه کارشناسیارشد. دانشگاه شهید بهشتی.
8
75 صفحه.
9
کفاشفرخد، ن.، 1398. تحلیلی بر تنوع زیستی خزندگان (مارها و سوسمارهای) شاخص استان خراسان رضوی. همایش ملی تنوع زیستی و تاثیر آن بر کشاورزی و محیط زیست. صفحات 1041 تا 1046.
10
نصرآبادی، ر. و درویش، ج.، 1387. بررسی فون سوسماران بخش صالحآباد تربتجام استان خراسان رضوی. مجله زیست شناسی ایران. شماره 21، صفحات 361 تا 368.
11
یوسفی، م. و خانی، ع.، همکاران. 1392. فون سوسماران شهرستان سبزوار با تأکید بر گونههای همزیستگاه بههمراه ارائه چارچوبی برای تهیه نقطههای پراکنش خزندگان ایران. تاکسونومی و بیوسیستماتیک. شماره 16، صفحات 1 تا 6.
12
Anderson, S.C., 1963. Amphibians and Reptiles from Iran. California Academy of Science. Vol. 31, pp: 417-498.
13
Anderson, S.C., 1999. The Lizard of Iran, Society for the study of Amphibians and Reptiles. Oxford. Ohio. 442 p.
14
Cortes-Gomez, A.M. and Ruiz-Agudelo, C.A., 2015. Ecological functions of neotropical amphibians and reptiles: a review Universitas Scientiarum. Vol. 20, pp: 229-245.
15
Darvish, J. and Rastegar-Pouyani, E., 2012. Biodiversity Conservation of Reptiles and Mammals in the Khorasan Provinces, Northeast of Iran. Progress in Biological Sciences. Vol. 2, pp: 95-109.
16
Hanski, I.; Clobert, J. and Reid, W., 1995. Ecology of Extniction. Global Biodiversity assessment. Combridge, Combridge University press. pp: 232-245.
17
Leviton, A.E.; Anderson, S.C.; Adler, K.K. and Minton, S.A., 1992. Handbook to Middle East Amphibians and Reptiles. Contributions in herpetology, Society for the Study of Amphibians and Reptiles. Oxford. Ohio. 252 p.
18
Nasrabadi, R. and Rastegar-Pouyani, E., 2016. A checklist of herpetofauna from Sabzevar, Northeastern Iran. Iraninan Journal of Animal Biosystematic. Vol. 12, pp: 255-259.
19
Rastegar-Pouyani,E. and Rastegar-Pouyani, N., 2010. Molecular phylogeny of the Eremias persica complex of the Iranian plateau (Reptilia: Lacertidae), based on mtDNA sequences. Zoological Journal of the Linnean Society. Vol.158, pp: 641-660.
20
Rastegar-Pouyani, N., 1999. Analysis of geographic variation in the Trapelus agilis complex (Sauria: Agamidae), Zoology in the Middle East. Vol. 19, pp: 75-99.
21
Rastegar-Pouyani, N. and Faizi, H., 2011. A brief history and current status of herpetology in Iran. Amphibian and Reptile Conservation. Vol, 5, pp: 37-46.
22
Rastegar-Pouyani, N. and Kami, H.G., 2008. Annotated Checklist of Amphibians and Reptiles of Iran,Iranian Journal of Animal Biosystematic. Vol, 4, pp: 7-30.
23
Smart, R. and Whiting, M.J., 2005. Lizards and landscapes: integrating field surveys and interviews to assess the impact of human disturbance on lizard assemblages and selected reptiles in a savanna in South Africa. Biological Conservation. Vol. 112, pp: 23-31.
24
Uetz, P. andHallermann, J., 2017. The reptile database. Available from. http://reptile database.org.
25
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی میزان آلودگی لاک پشت منقار عقابی (Eretmochelys imbricata) به فلزات سنگین (سرب و کادمیوم) در جزیره کیش
هدف از این تحقیق بررسی میزان آلودگی لاکپشت منقار عقابی به فلزات سنگین سرب و کادمیوم در جزیره کیش است. بدین منظور در خرداد ۱۳۹۵، ۲۰ نمونه نابالغ، ۲۰ پوسته تخم و 4 جنین از لانههای ناموفق گونه در سایت حفاظت شده جزیره کیش، بههمراه ۱۷ نمونه رسوب، نمونهبرداری و پس از عصارهگیری بهروش هضم مرطوب، غلظت سرب و کادمیوم آن توسط دستگاه جذب اتمی اندازهگیری گردید. میانگین غلظت سرب در نمونه نابالغ، جنین و پوسته تخم بهترتیب 0/67±7/44، 1/34±11/44 و 3/33±12/22 و میانگین غلظت کادمیوم بهترتیب 0/14± 0/44، 0/52± 0/84 و 0/49± 0/87 میلیگرم بر گیلوگرم بهدست آمد. براساس آنالیز واریانس یکطرفه و آزمون LSD، میانگین غلظت سرب در جنین و پوسته تخم تفاوت معنیدار ندارد ولی از نمونههای نابالغ بیشتر است. براساس آزمون کروسکال والیس، میانگین غلظت کادمیوم بین سه گروه مورد بررسی دارای تفاوت معنیدار نمیباشد. براساس آزمون تحلیل دوجملهای، میانگین غلظت کادمیوم در پوسته تخم از سطح 2-1 میلیگرم بر کیلوگرم که میتواند باعث ایجاد مشکلات منفی بیولوژیکی و تولیدمثلی گردد پایینتر میباشد. از طرفی براساس آزمون تی، میانگین غلظت سرب در پوسته تخم از سطح 4/7 میلیگرم بر کیلوگرم که میتواند باعث بروز صدمات جبران ناپذیرگردد، بالاتر گزارش گردید. میانگین غلظت سرب و کادمیوم در رسوبات منطقه بهترتیب 7/95±65/69 و 0/75±2/82 میلیگرم بر کیلوگرم بهدست آمد که براساس آزمون تحلیل دوجملهای، بالاتر از میزان استاندارد رسوب است.
http://www.aejournal.ir/article_80981_1d306b6871307bb58261708b51f3305e.pdf
2018-09-23
133
140
Eretmochelys imbricata
لاک پشت منقار عقابی
سرب
کادمیوم
جزیره کیش
عاطفه
چمنی
atefehchamani@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، واحد خوراسگان، دانشگاه آزاد اسلامی، اصفهان، ایران
LEAD_AUTHOR
محدثه
کاظمی
mohadese_kazemi@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، واحد خوراسگان، دانشگاه آزاد اسلامی، اصفهان، ایران
AUTHOR
حامد
محمدی
mohammadi_h@yahoo.com
3
اداره محیط زیست سازمان منطقه آزاد کیش
AUTHOR
احسانپور، م.؛ احمدی، م.ر.؛ بحری، ا.ه.و افخمی، م.، 1392. بررسی برخی پارامترهای یونی و هورمونی سرم خون لاکپشت عقابی (Eretmochelys imbricate) خارج از فصل تخمگذاری در جزیره قشم (خلیج فارس). فصلنامه علمی-پژوهشی آبزیان و شیلات. دوره 3، شماره 12، صفحات ۱ تا ۸.
1
احسانی، ج.؛ رومیانی، ل. و قبطانی، ع.، 1394. بررسی میزان تجمع زیستی فلزات سنگین (روی، مس، کادمیوم و سرب) در پوست و عضله میگوی سفید بحرکان، شمالغرب خلیج فارس. مجله علوم و فنون دریایی. دوره ۱۴، شماره ۲، صفحات ۹۵ تا ۸۵.
2
بنایی، م. و رعیتپیشه، م.، 1385. اکولوژی دریا (اکوسیستمهای دریایی و اقیانوس). انتشارات نقش مهر. 268 صفحه.
3
پاشایی، ر.؛ قلیزاده، م. و جدیریایران، ک.، 1393. بررسی موارد نشت نفت در زیست بوم خلیج فارس و تأثیرات آن بر گونههای جانوری و طبیعی منطقه. اولین همایش ملی بهداشت محیط، سلامت و محیط زیست پایدار، دانشکده شهید مفتح همدان.
4
حبیبی، س.؛ صفاهیه، ع.ر. و پاشازانوسی، ح.، 1391. تعیین سطح ناپاکی رسوبات ساحلی استان بوشهر نسبت به فلزات سنگین (Ni، Pb، Cu و Cd). مجله علوم و فنون دریایی. دوره ۱۱، شماره 4، صفحات 95 تا 84.
5
حسینی، م. و عبدیبسطامی، ا.، 1391. غلظت فلزات سنگین (Ni، Pb، Cu و Cd) در خرچنگ شناگر آبی (Portunus pelagicus) و رسوبات زیستگاه آن در آبهای ساحل بوشهر. هفدهمین کنفرانس سراسری و پنجمین کنفرانس بینالمللی زیستشناسی ایران، دانشگاه شهید باهنر کرمان.
6
رحمانییگانه، ف. و رجبپور، م.، 139۳. تجمع زیستی فلزات سنگین سرب و وانادیوم در اندامهای مختلف لاکپشت برکهای خزری (Mauremys caspica). اولین همایش الکترونیکی یافتههای نوین در محیط زیست و اکوسیستمهای کشاورزی، پژوهشکده انرژیهای نو و محیط زیست دانشگاه تهران.
7
زارع، ر.ا. و رحیمی، ر.ا.، 1388. بررسی عوامل تهدیدکننده حیات لاکپشتهای دریایی در برخی از جزایر شمالی خلیج فارس. همایش بینالمللی خلیج فارس، بوشهر، دانشگاه آزاد اسلامی واحد بوشهر.
8
سعیدپور، ب.؛ سواری، ا. و احمدی، م ر.، 13۹2. بررسی برخی صفات زیستی لاکپشتهای دریایی در جزیره هرمز و هنگام. مجله پژوهش و سازندگی. شماره ۶۱، صفحات ۸۰ تا ۷۶.
9
صفاهیه، ع.؛ فرهاد، م.؛ نبوی، م.؛ غانمی، ک.؛ موحدینیا، ع. و دارابپور، م.، 1390. تجمع فلزات سنگین Pb، Cu، V و Ni در رسوب و دوکفهای (Crassostera Gigas) در بندر امام خمینی. نشریه اقیانوس شناسی. دوره2، صفحات 59-45.
10
صفری، م.، 1393. سواحل خلیج فارس مامنی برای لاکپشتان منقار عقابی. وب سایت کویرهای ایران.
11
فیروز، ا.، 1387. حیات وحش ایران. مرکز نشر دانشگاهی. ۹۵۶ صفحه.
12
کریمینیا، ط.؛ امامی، ف. و چنگیزی، ع.، 1388. بررسی تنوع گونه و موقعیت حفاظتی لاکپشتهای دریایی خلیج فارس. همایش بینالمللی خلیج فارس، دانشگاه آزاد اسلامی واحد بوشهر.
13
لقمانی، م.، سواری، ا.؛ مبارکی، ا. و صادقی، پ.، 1389. بررسی لانهگزینی لاکپشت عقابی (Eretmochelys imbricate) در سواحل جزیره هرمز. مجله زیستشناسی ایران. دوره ۲۰۱۱، شماره ۲، صفحات ۸۹۲-۸۸۴.
14
مرتضوی، ث.؛ اسماعیلیساری، ع. و ریاحیبختیاری، ع.، 1381. سنجش میزان روی، سرب و کادمیوم در صدف خوراکی صخرهها در سواحل استان هرمزگان. مجله علوم دریایی ایران. دوره ۲، شماره ۱، صفحات 76-67.
15
مقیمی، م.؛ نقاش، ح.؛ آلهخورشید، م.؛ چوی، ر. و قاسمی، ص.، 1389. بررسی زیستگاه و خصوصیات زیستسنجی لاکپشت گونه نوک عقابی Eretmochelys imbricate در تالابهای ساحلی خلیج فارس، جزیره نخیلو استان بوشهر. مجله اکوبیولوژی تالاب. دوره 2، شماره 3، صفحات ۲۵-۱۴.
16
میرزا، ر.؛ دادالهی، س.؛ صفاهیه، ع.؛ محمدی، م.؛ سواری، ا. و عابدی، ا.، 1390. هیدروکربنهای آروماتیک چند حلقهای (PAHs) در رسوبات و صدف صخرهای (Saccostrea cucullata) در منطقه بین جزر و مدی سواحل استان بوشهر (خلیج فارس). نشریه اقیانوس شناسی. دوره ۲، شماره ۵، صفحات 19-11.
17
Agah, H.; Leermakers, M.; Marc Elskens, S. and Fatemi, M., 2009. Accumulation of trace metals in the muscle and liver tissues of five species from the Persian Gulf. Environmental Monitoring and Assessmen. Vol. 157,
18
pp: 499-514.
19
Al-Yousf, M.H.; El-shahawi, M.S. and Al-Ghais, S.M., 2000. Trace metals in liver, skin and muscle of Lethrinus lentjan fish species in relation to body Length and sex. Science of the Total Environment. Vol. 256, pp: 87-94.
20
Anan, Y.; Takashi, K.; Watanabe, I.; Sakai, H.; Tanabe, H., 2001.Trace element accumulation in Hawksbill turtles (Eretmochels imbricat) and green turtles (Chelonia mydas) fromYaeyama Islands, Japan. Environmental Toxicology and Chemistry. Vol. 20, No. 12, pp: 2802-2814.
21
AOAC. 1980. Official methods of analysis, Association of official analytical chemists, INC, Arlington, Virginia, USA.
22
Askari Hesni, M.; Tabib, M. and Hadi Ramaki, A., 2016. Nesting ecology and reproductive biology of the hawksbill turtle, Eretmochelys imbricata, at Kish Island, Persian Gulf. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. Vol. 96, No. 7, pp: 1373-1378.
23
Barbieri, E.; 2009. Concentration of heavy metals in tissues of green turles (Chelonia mydas) sampled in the Cananeia estuary, Brazil. Brazilian Journal of Oceanography. Vol. 57, No. 3, pp: 243-248.
24
Beggs, J.A.; Horrocks, J.A. and Krueger, B.H., 2007. Increase in hawksbill sea turtle (Eretmochelys imbricata) nesting in Barbados, West Indies. Endangered Species Research. Vol. 3, pp: 159-168.
25
Bishop, C.H.; Pettit, P.; Kennedy, S.; Stegeman, J.; Norstrom, R. and Brooks, R., 1998. Environmental contamination and developmental abnormalities in eggs and hatchlings of the common snapping turtle (Chelydra serpentine serpentine) from the Great Lakes StLawrence River basin. Environmental Pollutant. Vol. 101, No. 1, pp: 143-56.
26
Burger, J.; Gochfeld, M.; Jeitner, C.; Burke, S.; Volz, C. and singaroff, D., 2009. Mercury and other metal in egg and feathers of glaucous winged gulls (larus gloucescens) in the Aleutians, Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 152, pp: 179-194.
27
Eisler, R., 1985. Cadmium hazards to fish, wildlife, and invertebrates: a synoptic review. Contaminant Hazard Reviews Report No. 2. US Fish and Wildlife Service, Patuxent Wildlife Research Center Laurel, MD.
28
Eisler, R., 1988. Arsenic hazards to fish, wildlife, and invertebrates: a synoptic review. U.S. Fish and Wildlife Service Biology Report. Vol. 85, pp: 1-12.
29
Frameschi, I.F.; Andrade, L.S.; Fransozo, V.; Fernandes-Goes, L.C.; Furlan, M. and Fransozo, A., 2016. Ecological distribution of the hermit crab Dardanus insignis in shallow waters of the tropical-subtropical transition zone on the Brazilian coast. Marine biodiversity. Vol. 46, No. 2, pp: 389-397.
30
IUCN. 2015. The IUCN Red List of Threatened Species. http://www.iucnredlist.org.
31
Gustavo, T.T.; Barbosa, I.; Pires, T.; Rostan, G.; Goldberg, D.; Pinto, L.; Korn, M. and Franke, C., 2015. Trace elements distribution in hawksbill turtle (Eretmochelys imbricata) and green turtle (Chelonia mydas) tissues on the northern coast of Bahia, Brazil. Marine Pollution Bulletin. Vol. 94, No. 2015, pp: 284-289.
32
Kamel, S.J. and Mrosovsky, N., 2005. Repeatability of nesting preferences in the hawksbill sea turtle, Eretmochelys imbricata, and their fitness consequences. Animal Behaviour. Vol. 70, pp: 819-828.
33
Mendil, D.; Unal, O.F.; Tuzen, M. and Soylak, M., 2010. Determinaition of trace metals in different fish species and sediment from the River Yesilirmark in Tokat, Turkey. Food and Chemical Toxicology. Vol. 48, pp: 1383-1392.
34
Tsipoura, N.; Burger, J.; Newhouse, M.; Jeitner, Ch.; Gochfeld, M. and Mizrahi, D., 2011. Lead, mercury, cadmium, chromium, and arsenic levels in eggs, feathers, and tissues of Canada geese of the New Jersey Meadowlands, Environmental Research. Vol. 111, pp: 775-784.
35
Wood, D.W. and Bjorndal, K.A., 2001. Relation temperature, moisture, salting and slope to nest site selection in loggerhead sea turtles. Copeia. Vol. 16, pp: 119-128.
36
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی پراکنش و ترکیب طولی بچه ماهیان کفال پوزه باریک (Liza saliens) در آب های ساحلی جنوب شرق دریای خزر و خلیج گرگان
در این مطالعه وضعیت پراکنش و گروه های طولی بچهماهیان کفال پوزه باریک (Liza saliens) در آب های ساحلی جنوب شرق دریای خزر و خلیج گرگان از تیرماه 1393 تا خرداد ماه 1394مورد بررسی قرار گرفت. نمونه برداری با استفاده از تور پره با چشمه 2 میلی متر در پنج ایستگاه انتخابی شامل دو ایستگاه در ساحل شرقی خزر و سه ایستگاه در ساحل شمالی خلیج گرگان انجام گردید. نمونه های صید شده در ایستگاه ها متعلق به کوچک ترین بچه ماهیان کفال در دامنه طولی 13 الی 90 میلی متر بودند. در فصل تابستان و در خلیج گرگان اغلب نمونه ها در دامنه طولی 18 تا 38 میلی متر قرار داشتند اما در ایستگاه های خزری بیش ترین فراوانی در طول های 30 تا 62 میلی متر ثبت گردید که دارای توزیع یکنواخت تری بود. کوچک ترین نمونه ها با حد کمینه طول TL) 13) میلی متر در فصل تابستان صید شدند. در پاییز و زمستان بچه ماهیان کفال در تمام ایستگاه ها حضور داشتند اما در زمستان تعداد نمونه های صید شده در خلیج گرگان کاهش چند برابری داشت. براساس نتایج حاصله بچه ماهیان کفال از جمعیت قابل توجهی در آب های نزدیک ساحل منطقه و به خصوص خلیج گرگان برخوردارند و این آب ها در واقع یک زیستگاه پرورشی برای آن ها محسوب می شوند. پدیدار شدن نسل جدید بچه ماهیان کفال پوزه باریک و آغاز چرخه زندگی آن ها در اواخر بهار رخ می دهد که دارای شباهت با محدوده غربی انتشار جغرافیایی این گونه واقع در زیستگاه های دریای مدیترانه می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_81041_2a07215ac6d31d42bee64d05446fb81d.pdf
2018-09-23
141
152
بچه ماهی
گروه های طولی
ساختار جمعیت
کفال پوزه باریک
دریای خزر
خلیج گرگان
شاهین
شهلاپور
shahinfly@hotmail.com
1
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، فرح آباد، صندوق پستی: 961
LEAD_AUTHOR
محمدعلی
افرایی
mafraei@yahoo.com
2
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات،آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، فرح آباد، صندوق پستی: 961
AUTHOR
مهناز
ربانی ها
rab.mahnaz@gmail.com
3
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، تهران، صندوق پستی: 149-14965
AUTHOR
فضلی، ح.؛ دریانبرد، غ.؛ عبدالملکی، ش. و بندانی، غ.، 1391. ارزیابی وضعیت ذخایر کفال پوزه باریک (Liza saliens) با استفاده از شاخص های صید بی رویه در سواحل جنوبی دریای خزر در سال های 1390-1370. نشریه بهره برداری و پرورش آبزیان. جلد 2، شماره 1، صفحات 55 تا 68.
1
نادری جلودار، م. و عبدلی، ا.، 1383. اطلس ماهیان حوزه جنوبی دریای خزر (آبهای ایران). موسسه تحقیقات شیلات ایران. 112 صفحه.
2
Altin, A.; Ayyildiz, H.; Kale, S. and Alver, C., 2015. Length-weight relationships of forty-nine fish species from shallow waters of Gökçeada Island, northern Aegean Sea, Turkey. Turkish Journal of Zoology. Vol. 39, pp: 971-975.
3
Bartulović, V.; Matić-Skoko, S.; Lučić, D.; Conides, A.; Jasprica, N.; Joksimović, A.; Dulčić, J. and Glamuzina, B., 2009. Recruitment and feeding of juvenile leaping grey mullet, Liza saliens (Risso, 1810) in the Neretva River estuary (south-eastern Adriatic, Croatia). Acta Adriatica. Vol. 50, pp: 91-103.
4
Bartulović, V.; Matić-Skoko, S.; Lučić, D.; Conides, A.; Jasprica, N.; Joksimović, A.; Dulčić, J. and Glamuzina, B., 2009. Recruitment and feeding of juvenile leaping grey mullet, Liza saliens (Risso, 1810) in the Neretva River estuary (south-eastern Adriatic, Croatia). Acta Adriatica. Vol. 50, pp: 91-103.
5
Breitburg, D.L., 1988. Effects of turbidity on prey consumption by striped bass larvae. Transactions of the American Fisheries Society. Vol. 117, pp: 72-77.
6
Cardona, L.; Hereu, B. and Torras, X., 2008. Juvenile bottlenecks and salinity shape grey mullet assemblages in Mediterranean estuaries. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 77, pp: 623-632.
7
Dzarmatova, Z.I. and Plieva, A.M., 2012. The structure of spawning population and reproductive potential of mullet in the middle Caspian Sea. The South of Russia: ecology, development. Vol. 2, pp: 26-37 (In Russia).
8
Fazli, H., 2011. Stock assessment of the bony fishes in Iranian coastal waters of the Caspian Sea (2007-2010) Iranian Fisheries Science Research Organization.
9
Firoozfar, A.; Bromhead, E.; Dykes, A.P. and Neshaei, M.A.L., 2012. Southern Caspian Sea coasts, morphology, sediment characteristics, and sea level change. Proceedings of the Annual International Conference on Soils, Sediments, Water & Energy. Vol. 17, No. 12, pp: 123-150.
10
Franco, A.; Franzoi, P.; Malavasi, S.; Riccato, F.; Torricelli, P. and Mainardi, D., 2006. Use of shallow water habitats by fish assemblages in a Mediterranean coastal lagoon. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 66, pp: 67-83.
11
Ghadirnejad, H. and Ryland, J.S., 1996. A study of food and feeding of grey mullets in southern of the Caspian Sea. Gutshop. Vol. 96, pp: 137-144.
12
Keskin, C., 2007. Temporal variation of fish assemblages in different shallow-water habitats in Erdek Bay, Marmara Sea, Turkey. Journal of Black Sea/Mediterranean Environment. Vol. 13, pp: 215-234.
13
Keskin, C. and Gaygusuz, Ö., 2010. Length weight relationships of fishes in shallow waters of Erdek Bay (Sea of Marmara, Turkey). IUFS Journal of Biology. Vol. 69, pp: 87-94.
14
Koutrakis, E.T., 2011. Reproductive biology of two grey mullet species (Actinopterygii: Mugiliformes: Mugilidae) in a northern Aegean Sea estuarine system. Acta Ichthyologica et Piscatoria. Vol. 41, No. 1, pp: 37-46.
15
Koutrakis, E.T.; Kallianiotis, A.A. and Tsikliras, A.C., 2004. Temporal patterns of larval fish distribution and abundance in a coastal area of northern Greece. Scientia Marina. Vol. 68, pp: 585-595.
16
Koutrakis, E.T.; Kokkinakis, A.K.; Eleftheriadis, E.A. and Argyropoulou, M.D., 2000. Seasonal changes in distribution and abundance of the fish fauna in the two estuarine systems of Strymonikos Gulf (Macedonia, Greece). Belgian Journal of Zoology. Vol. 130, pp: 41-48.
17
Mićković, B.; Nikčević, M.; Hegediš, A.; Regner, S.; Gačić, Z. and Krpo-Ćetković, J., 2010. Mullet fry (Mugilidae) in coastal waters of Montenegro, their spatial distribution and migration phenology. Archives of Biological Sciences. Vol. 62, pp: 107-114.
18
Miner, J.G. and Stein, R.A., 1996. Detection of predators and habitat choice by small bluegills: effects of turbidity and alternative prey. Transactions of the American Fisheries Society. Vol. 125, pp: 97-103.
19
Patimar, R., 2008. Some biological aspects of the sharpnose mullet Liza saliens (Risso, 1810) in Gorgan Bay-Miankaleh Wildlife Refuge (the southeast Caspian Sea). Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 8, pp: 225-232.
20
Probatov, S.N. and Tereshchenko, K.K., 1951. The Caspian Sea mullets and its fisheries. Pishchepromizdat, Moscow. 115 p.
21
Verdiell-Cubedo, D.; Egea-Serrano, A.; Oliva-Paterna, F.J. and Torralva, M., 2007. Biología trófica de los juveniles del género Liza (Pisces: Mugilidae) en la laguna costera del Mar Menor (SE Península Ibérica). Limnetica. Vol. 26, pp: 67-73.
22
Vidy, G. and Franc, J., 1992. Saisons de présence à la côte des avelins de muges (muglilidae) en Tunisie. Cybium. Vol. 16, pp: 53-71.
23
ORIGINAL_ARTICLE
اثر مکمل غذایی جلبک کلرلا (Chlorella vulgaris) بر عملکرد رشد، تغذیه و ترکیبات شیمیایی بدن ماهی کفال خاکستری (Mugil cephalus Linnaeus 1758)
تحقیق حاضر به منظور بررسی اثر جلبک کلرلا (Chlorella vulgaris) بر شاخص های رشد، تغذیه (ضریب تبدیل غذایی، میزان غذای دریافتی، راندمان مصرف پروتئین، راندمان مصرف چربی) و ترکیب شیمیایی ماهی کفال خاکستری به مدت 60 روز صورت گرفت. در این مطالعه، تعداد 120 قطعه ماهی کفال ماهی با میانگین وزنی 2/01±14/95 گرم در یک طرح کاملاً تصادفی با 4 تیمار آزمایشی و 3 تکرار (با تعداد 10 قطعه در هر تکرار) مورد آزمایش قرار گرفتند. تیمار شاهد (بدون پودر جلبک) و تیمارهای آزمایشی 2، 3 و 4 به ترتیب دارای 5، 10و 15 گرم بر کیلوگرم پودر جلبک در غذا بودند. در پایان آزمایش، بالاترین طول نهایی 0/10±11/08 سانتی متر، میزان افزایش وزن به دست آمده 12/39±216/85 گرم، میزان رشد روزانه 0/18±6/53 درصد، نرخ رشد ویژه 0/07±0/90، کم ترین میزان غذای دریافتی 0/03±0/99 درصد، بالاترین راندمان مصرف پروتئین 0/24±4/37 درصد و بالاترین راندمان مصرف چربی 0/09±1/23 درصد در تیمار حاوی 5 گرم بر کیلوگرم پودر جلبک مشاهده شد که با تیمار شاهد دارای تفاوت معنی دار بود (0/05>P). بیش ترین میزان پروتئین خام و رطوبت در تیمار حاوی 10 گرم جلبک بر کیلوگرم غذا مشاهده شد. در مجموع براساس نتایج این تحقیق افزودن 5 گرم بر کیلوگرم پودرجلبک کلرلا به جیره غذایی ماهی کفال خاکستری به منظور بهبود شاخص های رشد (میزان غذای دریافتی، میزان رشد روزانه) و کیفیت لاشه در این ماهی پیشنهاد می شود.
http://www.aejournal.ir/article_81179_368c2bb40ae8ce5f9a5b7f162619e13a.pdf
2018-09-23
153
158
کفال ماهی
جلبک کلرلا
ترکیب لاشه
محرک رشد
پریا
اکبری
paria.akbary@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار
LEAD_AUTHOR
شهاب الدین
گرگیج
2
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار
AUTHOR
Abdulrahman, N.M., 2014. Effect of replacing fishmeal with Spirulinaspp. on carcass chemical composition of common carp Cyprinus carpioL.Iraqi Journal of. Veterinary Science. Vol. 28, pp: 67-70.
1
AOAC. 1989. Assosiation of Official Analytical Chemists (AOAC). Official Method of Analysis of the Assosiation of Official Analytical Chemists, 15th ed. Assosiation of Official Analytical Chemists, Arlington, VA, USA. 374 p.
2
Bai, S.C., 2001. Requirements of L-ascorbic acid in a viviparous marine teleost, Korean rochfish (Sebaster Schlegeli) In: Ascorbic acid in aquatic organism. Dabrowski, K., (Eds.) CRC press. 184 p.
3
Bai, S.C.; Koo, J.W.; Kim, K.W. and Kim, S.K., 2001. Effects of Chlorella powder as a feed additive on growth performance in juvenile Korean rockfish, Sebastes schlegeli (Hilgendorf). Aquaculture Research. Vol. 32, pp: 92-98.
4
Choi, Y.H.; Lee, B.J. and Nam, T.J., 2015. Effect of dietary inclusion of Pyropia yezoensis extract on biochemical andimmune responses of olive flounder Paralichthys olivaceus Aquaculture. Vol. 435, pp: 347-353.
5
Ebrahimi Dorche, I.; Tangestani, R.; Alizadeh Dvghyklayy, E. and Zare, P., 2013. Effect of different levels of garlic essential oil on growth, feed and carcass composition of beluga (Huso huso) Rearing young. Journal of Marine Science and Technology. Vol. 11, pp: 1-12.
6
Kim, K.W.; Bai, S.C.; Koo, J.W. and Wang, X., 2002. Effects of Dietary Chlorella ellipsoidea Supplementation on Growth, Blood Characteristics, and Whole-Body Compositionin Juvenile Japanese Flounder Paralichthys olivaceus. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 33, pp: 424-431.
7
Koo, J.; Bai, S.C.; Kim, K. and Kim, S., 2014.Optimum Dietary Level of Chlorella Powder as a Feed Additive for Growth Performance of Juvenile Olive Flounder, Paralichthys olivaceus. Journal of Applied Aquaculture. Vol. 11, pp: 55-66.
8
Milledge, J.J., 2011.Commercial application of microalgaeother than as biofuels: a brief review. Reveiw Environmental Science and Biotechnology. Vol. 10, pp: 31-41.
9
Misra, C.K.; Kuamr, D.B.; Mukherjee, S.C. and Pattnaik, P., 2006. Effect of long term administration of dietary â glucan on immunity, growth and survival of Labeo rohitafingerlings. Aquaculture. Vol. 255, pp: 82-94.
10
Nick, G.L., 2003. Addressing human exposure to environmental toxins with Chlorella pyrenoidosa Medicinal Properties in Whole Foods. Townend Letter for Doctors and Patients. (http://findarticles.com/ p/articles).
11
Pereira, R.; Valente, L.M.P.; Sousa-Pinto, I. and Rema, P., 2012. Apparent nutrient digestibility of seaweeds by rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) and Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Algal Resrearch. Vol. 1, pp: 77-82.
12
Porfaraj, V.; Karami, M.; Nezami, S.A.; Rafiee, G.R.; Khara, H. and Hamidoghli, A., 2013.Study of some biological features of Mullets in Iraniancoasts of the Caspian Sea. Journal of Utilization and Cultivation of Aquatics. Vol. 2, pp: 97-110.
13
Radhakrishnan, S.; Saravana Bhavan, P.; Seenivasan, C. and Muralisankar, T., 2015.Effect of dietary replacement of fishmeal with Chlorellavulgaris on growth performance, energy utilization anddigestive enzymes in Macrobrachium rosenbergii postlarvae. International Journal of Fisheries andAquaculture. Vol. 7, pp: 62-70
14
Rahimnejad, S.; Lee, S.M.; Park, H.G. and Choi, J., 2017. Effects of Dietary Inclusion of Chlorella vulgaris on Growth, Blood Biochemical Parameters, and Antioxidant Enzyme Activity in Olive Flounder, Paralichthys olivaceus Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 48, pp: 103-112.
15
Shalaby, A.M.; Khattab, Y.M. and Abdel rahman, A.M., 2006. Effects of garlic (Allium sativum) and chloramphenicol on growth performance, physiological parameters and survival of Nile Tilapia (Oreochromis niloticus). Journal of Venomous Animimals and ToxinsIncluding Tropical Diseases. Vol. 12, pp: 172-201.
16
Wahli, T.; Verlhac, V.; Griling, P.; Gabaudan, J. and Aebischer, C., 2003. Influence of dietary vitamin C on the wound healing process in rainbow trout (Oncorhyncus mykiss) Aquaculture. Vol. 225, pp: 371-386.
17
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی ترکیبات پروفیل اسیدآمینه ماهی کفال طلایی (Liza aurata) دریای خزر
هدف این مطالعه،بررسی و شناسایی ترکیب پروفیل اسیدهای آمینه در جنس نر و ماده ماهی کفال طلایی (Liza aurata) در دو دوره تولیدمثل و غیرتولیدمثل بود. بههمین منظور تعداد 100 قطعه ماهی کفال طلایی از صید پره، در دو فصل بهار (غیرتولیدمثل) و پاییز (تولیدمثل) در سواحل جنوبی دریای خزر جمع آوری گردید. پس از زیستسنجی نمونهها، اندازهگیری پروتئین با روش استاندارد کجلدال و آنالیز اسیدآمینه بهوسیله دستگاه HPLC انجام شد. نتایج نشان داد که ماهیان نر، میزان پروتئین بیشتری نسبت به ماهیان ماده داشتند. همچنین ماهیان در دوره غیرتولیدمثل دارای پروتئین بیشتری نسبت به ماهیان در دوره تولیدمثل بودند (0/05>p). از بین مجموع اسیدهای آمینه ضروری و غیرضروری در ماهیان نر و ماده، اختلاف معنیداری مشاهده نگردید (0/05<p)، بنابراین جنسیت تاثیری در محتوای اسیدهای آمینه ندارد. لیزین بیشترین مقدار را در مجموع اسیدهای آمینه ضروری و اسیدگلوتامیک بیشترین مقدار را در مجموع اسیدهای آمینه غیرضروری در هر دو جنس و در هر دو دوره تولیدمثلی بهخود اختصاص داد. بین مجموع اسیدهای آمینه ضروری و غیرضروری و کارایی پروتئین در دو دوره تولیدمثلی اختلاف معنیداری مشاهده گردید (0/05>p). نسبت TEAA/TNEAA ماهیان در دوره تولیدمثل 0/99 و در دوره غیرتولیدمثل 1، محاسبه شد. همچنین نسبت لوسین/ ایزولوسین در ماهی کفال طلایی از نسبت خوبی برخوردار بود. بنابراین ماهی کفال طلایی غنی از مهمترین اسیدهای آمینه موجود در آبزیان دریایی است و گوشت آن از کیفیت بالایی برخوردار میباشد.
http://www.aejournal.ir/article_81183_5ab7015d23317106b4cb342812d269a2.pdf
2018-09-23
159
166
اسیدآمینه
کفال طلایی
ارزش غذایی
دوره تولیدمثلی
دریای خزر
مهرنوش
نوروزی
nmehrnoosh@yahoo.com
1
گروه بیولوژی دریا، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد تنکابن، تنکابن، ایران
LEAD_AUTHOR
مصطفی
باقری توانی
mostafa.bagheri@hotmail.com
2
دانشگاه آزاد اسلامی، واحد تنکابن، باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، تنکابن، ایران
AUTHOR
جنتعلیپور،ح.؛شعبانپور، ب.؛صادقیماهونک، ع. و شعبانی، ع.،1388. بررسی ارزش تغذیهای فیلههای خام و کباب شده تاسماهی ایرانی (Acipenser persicus). مجله علوم تغذیه و صنایع غذایی ایران. سال 6، شماره 3، صفحات 85 تا 94.
1
سرحدی، ن.؛ معتمدزادگان، ع.؛ طاهری، ع. و آزاد، م.، 1391. بررسی مقایسهای ترکیبات مغذی و پروفیل اسیدهای آمینه در استخوانهای ماهی ساردین پهلو طلایی (Sardinella gibossa)، کیلکای آنچوی (Clupeonella engrauliformis) و موتو ماهی (Stolephorus indicus). مجله علمی شیلات ایران. سال 21، شماره 1، صفحات 101 تا 112.
2
شریفیان، م.، 1393. بررسی ترکیبات بدن ماهی بنی (Barbus sharpeyi) در محدوده گروههای طولی مختلف درمنابع آبی استان خوزستان. نشریه توسعه آبزیپروری. سال 8، شماره 3، صفحات 65 تا 76.
3
ذاکری، م.؛ کوچنین، پ. و جاسمغفله، م.، 1391. مقایسه ترکیب اسیدهای آمینه در بافت ماهیچه ماهیان وحشی و پرورشی نر و ماده شانک زرد باله (Acanthopagrus latus).مجله علوم و فنون دریایی. دوره 11، شماره 2، صفحات 58 تا 66.
4
نوروزی، م. وباقریتوانی، م.، 1395. تعیین ترکیبات بیوشیمیایی و ارتباط آن با برخی شاخصهای زیستی و فیزیولوژی ماهی کفال طلایی (Liza aurata) در دریای خزر. زیستشناسی دریا. سال 8، شماره 31، صفحات 45 تا 60.
5
هادیزاده، ز.؛ مورکی، ن. و معینی، س.، 1392. شناسایی ترکیب اسیدهای آمینه و اسیدهای چرب در گوشت ماهی سارم دهان بزرگ (Scomberoides commersonnianus) در خلیج فارس. مجله زیست شناسی دریا، سال 5، شماره 17، صفحات 35 تا 50.
6
Abdollahi, S.A. and Abolude, D.S., 2002. Investigation of protein quality of some fresh water fish species of Northern Nigeria. Academy Journal of Science and Technology. Vol. 2, No. 1, pp: 18-25.
7
Ackman, R.G., 1995. Composition and Nutritive Value of Fish and Shellfish Lipids, In: Fish and Fishery Products. In: Ruiter, A. (Eds.), CAB International Publish. pp: 117-159.
8
Ali, M.; Salam, A.; Goher, S.; Tassaduque, K. and Latif, M., 2004. Studies on fillet composition of fresh water farmed (Labeo rohita) in relation to body size. J. Biol. Scie. Vol. 4, pp: 40-46.
9
AOAC (Association of Official Analytic Chemists). 2005. Official Methods of Analysis AOAC, Washington DC, 1963 p.
10
AOAC (Association of Official Analytic Chemists). 1990. Official methods of analyses of association of analytical chemist (15th ed). Washington, DC: AOAC.
11
Belavady, B. and Udayasekhara Rao, P., 1979. Leucine and isoleucine content of jowar and its pellagragenicity. Indian Journal of Experimental Biology. Vol. 17, pp: 659-661.
12
Borresen, T., 1992. Quality of wild and reared fish. In: Huss, H.H., Jacobsen M., Liston, J. (Eds.). Quality assurance in the food industry. Elsevier, Amsterdam. pp: 1-17.
13
British Pharmacopoeia (BP). 2011. Official methods of analysis, (100th).
14
Brooks, S.; Tyler, C.R. and Sumpter, J.P., 1997. Egg quality in fish: what makes a good egg? Reviews in Fish Biology and Fisheries. Vol. 7, pp: 387-416.
15
Carpene, E.; Martin, B. and Libera, L.D., 1998. Biochemical differences in lateral muscle of wild and farmed gilthead sea bream (Sparus aurata L.). Fish Physiol. Biochem. Vol. 19, pp: 229-238.
16
Charlton, M., 2006. Branched-chain amino acid enriched supplements as therapy for liver disease. Journal of Nutrition. Vol. 136, No. 1, pp: 295S-298S.
17
Chen, C.; Sander, J.E. and Dale, N.M., 2003. The effect of dietary lysine deficiency on the immune response to Newcastle disease vaccination in chickens. Avian Diseases. Vol. 47, No. 4, pp: 1346-1351.
18
Chyung, J.H. and Griminger, P., 1984. Improvement of nitrogen retention by arginine and glycine supplementation and its relation to collagen synthesis in traumatized mature and ageing rats. Journal of Nutrition. Vol. 114, pp: 1705-1715.
19
FAO/WHO. 1985. Energy and protein requirements. Technical Report. WHO, Geneva, Switzerland. No. 72.
20
FAO/WHO. 1990. Energy and protein requirements. Report of joint FAO/ WHO/UNU Expert Consultation Technical Report. FAO/WHO and United Nations University, Geneva, Series No. 724, pp: 116-29.
21
Grigorakis, K; Alexis, M.N.; Taylor, K.D.A. and Hole, M., 2002. Comparison of wild and cultured gilthead sea bream (Sparus aurata); composition, appearance and seasonal variations. International Journal of Food Science & Technology. Vol. 37, pp: 477-484.
22
Hyland, K., 2007. Inherited disorders affecting dopamine and serotonin: critical neurotransmitters derived from aromatic amino acids, Journal of Nutrition. Vol. 137, No. 6, pp: 1568S-1572S.
23
Jacobsen, J.G. and Smith, L.H., 1968. Biochemistery and physiology of taurine and taurine derivatives. Physiological Reviews. Vol. 48, No. 2, pp: 424-511.
24
James, C.S., 1995. Analytical Chemistry of Foods. Blackie academic and professional press, London. pp: 90-92.
25
Kim, J.D. and Lall, S.P., 2000. Amino acid of composition whole body tissue of Atlantic halibut (Hippoglossus hippoglossus), yellowtail flounder (Pleuronectes ferruginea) and Japanese flounder (Paralichthys olivaceus). Aquaculture. Vol. 187, pp: 367-373.
26
Kmínková, M.; Winterom, R. and Kučera, J., 2001. Fatty acids in lipids of carp (Cyprinus carpio) tissues. Czech Journal of Food Sciences.Vol. 19, pp: 177-181.
27
Lee, H.Y.M. and Cho, K.C., 2008. Effects of dietary carbohydrate: lipid ratio on growth and body composition of juvenile Giant Croaker (Nibea japonica Temminck & Schlegel). World Aquaculture, Meeting Abstracts. 327 p.
28
Li, P.; Mai, K.; Trushenski, J. and Wu, G., 2008. New developments in fish amino acid nutrition: towards functional and environmentally oriented aqua feeds. Amino Acids. DOI 10.1007/s00726-008-0171-1.
29
Liao, S.M.; Du, Q.S.; Meng, J.Z.; Pang, Z.W. and Huang, R.B., 2013. Themultiple roles of histidine in protein interactions, Chemistry Central Journal. Vol. 7, pp: 44.
30
Mendoza, C., 2002. Effect of genetically modified low phytic acid plants on mineral Absorption. International Journal of Nutrition and Food Sciences. Vol. 37, pp: 759-767.
31
Mischoulon, D. and Fava, M., 2002. Role of S-adenosyl-L methionine in the treatment of depression: a review of the evidence. American Journal of Clinical Nutrition. Vol. 76, No. 5, pp:1158S-61S.
32
Mohanty, B.; Mohanty, A.; Ganguly, S.; Sankar, T.V.; Chakraborty, K.; Rangasamy, A.; Paul, B.; Sarma, D.; Mathew, S.; Kunnath Asha, K.; Behera, B.; Aftabuddin, M.D.; Debnath, D.; Vijayagopal, P.; Sridhar, N.; Akhtar, M.S.; Sahi, N.; Mitra, T.; Banerjee, S.; Paria, P.; Das, D.; Das, P., Vijayan, K.K.; Laxmanan, P.T. and Sharma, A.P., 2014. Amino Acid Compositions of 27 Food Fishes and Their Importance in Clinical Nutrition. J. Amino Acids. Vol. 2014, pp: 1-7.
33
NRC. 1993. National Research Council. National Academy of Sciences, Nutrient Requirements of Fish.Washington, USA. 124 p.
34
Oladapa, A.; Akın, M.A.S. and Olusegun, L.O., 1984. Quality changes of Nigerian traditionally processed freshwater fish species. II. Chemical composition. Journal of Food Technology. Vol. 19, pp: 341-348.
35
Pellett, P.L., 1996. World essential amino acid supply with special attention to South-East Asia. The United Nations University. Food and Nutrition Bulletin. Vol. 17, No. 3, pp: 204-234.
36
Ruiz-Capillas, C. and Moral, A., 2001. Changes in free amino acids during chilled storage of hake (Merluccius merluccius) in controlled atmospheres and their use as a quality control index. journal European Food Research and Technology. Vol. 212, No. 3, pp: 302-307.
37
Sandstrom, B.; Almgren, A.; Kivisto, B. and Cederblad, A., 1989. Effect of protein and protein source on zinc absorption in humans. Journal of Nutrition. pp: 48-53.
38
Sarma, D.; Akhtar, M.S. and Das, P., 2013. Nutritional quality in terms of amino acid and fatty acid of five coldwater fish species: implications to human health. National Academy Science Letters. Vol. 36, No. 4. pp: 385-391.
39
Satterlee, L.D.; Marshal, H.F. and Tennyson, J.M., 1979. Measuring proteins quality. Journal of the American Oil Chemists' Society. Vol. 56, pp: 103-109.
40
Segura, R. and Ventura, J.L., 1988. Effect of L-tryptophan supplementation on exercise performance. International Journal of Sports Medicine journal. Vol. 9, No. 5, pp: 301-305.
41
Tzikas, Z.; Amvrosiadis, I.; Soultos. N. and Georga kis, S., 2007. Seasonal Variation in the Chemical Compositi on and Microbiological Condition of Mediterranean Horse Mackarel (Trachurus mediterraneus) Muscle from the North Aegean Sea (Greece). Food Control. Vol. 18, pp: 251-257.
42
Wang, W.; Wu, Z.; Dai, Z.; Yang, Y.; Wang, J. and Wu, G., 2013. Glycine metabolism in animals and humans: implications for nutrition and health. Amino Acids. Vol. 45, No. 3, pp: 463-477.
43
Williams, M., 2005. Dietary supplements and sports performance. Journal of the International Society of Sports Nutrition. Vol. 2, No. 2, pp: 63-67.
44
Wilson, R.P. and Cowey, C.B., 1985. Amino acide composition of whole body tissue of rainbow trout and Atlantic salmon. Aquaculture. Vol. 48, pp: 373-376.
45
Wu, G., 2013. Functional amino acids in nutrition and health. Amino Acids. Vol. 45, No. 3, pp: 407-411.
46
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تاثیر کارگاه های پرورش ماهی قزل آلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss) بر برخی پارامترهای کیفی آب رودخانه خالکائی، ماسال، استان گیلان
رودخانه خالکائی از رودهای شمال کشور بوده که از شهر ماسال عبور نموده و وارد تالاب انزلی میگردد. دراین تحقیق به منظور بررسی اثرات کارگاههای پرورش ماهی قزل آلای رنگینکمان بر کیفیت آب رودخانه خالکائی و روند خودپالایی آن،هشت ایستگاه نمونهبرداری قبل و بعد از چهار کارگاه تکثیر و پرورش ماهی در مسیر رودخانه انتخاب شدند. اندازه گیری خصوصیات فیزیکوشیمیایی و مواد مغذی آب شامل دما، pH،هدایت الکتریکی (EC)، کل مواد جامد محلول (TDS)، اکسیژن محلول (DO)، اکسیژن مورد نیاز بیولوژیکی (BOD5)، اکسیژن مورد نیاز شیمیایی (COD)، فسفات (PO4)، نیترات (NO3) و نیتریت (NO2) هر ماه یک بار در یک دوره پنج ماهه در سال 1395 صورت گرفت. نتایج میانگین برای ایستگاههای ورودی به مزارع، DO 0/62±10/09 میلیگرم در لیتر، BOD5 2/16±6/62 میلیگرم در لیتر، PO4 0/005±0/048 میلی گرم درلیتر و NO2 0/004±0/035 میلیگرم در لیتر بهدست آمد. همچنین برای ایستگاههای خروجی، DO 0/73±9/20 میلیگرم در لیتر، BOD5 3/97±12/81 میلیگرم در لیتر، PO4 0/007± 0/075 میلیگرم در لیتر و NO2 0/009±0/088 میلیگرم در لیتر محاسبه شد. در این مطالعه مقادیر پارامترهای فوق در ایستگاههای مختلف دارای نوساناتی بوده و برخی از آنها شامل BOD5، COD، فسفات، نیترات و نیتریت در ایستگاههای خروجی مزارع پرورش ماهی نسبت به ورودی اختلاف معنیداری داشتند (0/05>p). مقادیر پارامترهای BOD5، COD، TDS، EC، فسفات و نیتریت بین ماههای مختلف دارای تفاوت معنیداری بودند (0/05>p) که نتیجه تاثیر مزارع پرورش ماهی و خودپالایی رودخانه میباشد. این فاکتورها در ماههای مختلف نیز در تغییر بوده که علت اصلی آن تغییر شرایط محیطی و شدت فعالیت کارگاهها بود.
http://www.aejournal.ir/article_81326_cb953cb67d2e86e55ce2ab9751b98175.pdf
2018-09-23
167
174
قزل آلای رنگین کمان
پارامترهای کیفی آب
پساب
رودخانه خالکائی
استان گیلان
ساناز
رحیمی
anazs2656@gmail.com
1
گروه محیط زیست، واحدلاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
AUTHOR
فاطمه
شریعتی
shariat_20@yahoo.com
2
گروه محیط زیست، واحدلاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
LEAD_AUTHOR
حسین
خارا
h.khara1974@yahoo.com
3
گروه شیلات، واحدلاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
AUTHOR
اسماعیلیساری،ع.، 1383. هیدروشیمی، بنیان آبزیپروری، انتشارات اصلانی. 249 صفحه.
1
اسماعیلیساری،ع.،1396. مبانی مدیریت کیفی آب در آبزی پروری. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 260 صفحه.
2
اکبرزاده، ا.؛ خارا، ح.؛ نظامی، ش.؛ ستاری، م.؛ موسوی، ع.؛ جوادی، ا.؛ آذرخش، م.؛ شامخی، ا. و طالشیان، ح.، 1390. مقایسه ویژگیهای ریختشناسی و برخی خصوصیات زیستشناسی قزلآلای خال قرمز رودخانههای چسلی و خرما در استان گیلان. مجله علوم و فنون دریایی. دوره10، شماره 4، صفحات 34 تا 46.
3
حسینعلیثانی، ط.، 1376. اثر پساب کارگاه پرورش ماهی بر کیفیت آب رودخانه دو هزار. پایاننامه کارشناسیارشد، دانشگاه تهران. 115 صفحه.
4
باقری، م.؛ فرزان، م.؛ طالبی، م.ع.؛ کرمی، م. و منصوری، پ.، 1396. مقایسه پارامترهای کیفی آب رودخانههای صمصامی و دیناران با استانداردهای کیفی آب برای پرورش ماهی. مجله علمی شیلات ایران. سال 26، شماره 4، صفحات 25 تا 36.
5
حسینی، س.ح.؛ سجادی، م.م.؛ کامرانی، ا.؛ سورینژاد، ا. و رنجبر، ح.، 1392. تاثیر پساب مزارع پرورش ماهی قزلآلای رنگین کمان بر پارامترهای فیزیکوشیمیایی آب رودخانه ریجاب (استان کرمانشاه). مجله بوم شناسی آبزیان. دوره 2، شماره 4، صفحات 29 تا 39.
6
سبحاناردکانی، س.؛ محرابی، ز. و احتشامی، م.، 1393. ارزیابی تاثیر پساب کارگاههای تکثیر و پرورش ماهی بر کیفیت فیزیکوشیمیایی آب رودخانه کبکیان در سال 90. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. دوره 24، شماره 113، صفحات 140 تا 149.
7
سرخوش، س.؛ پاتیمار، ر. و جعفریان، ح.، 1396. اثر کارگاه پرورش ماهی سردآبی کاج بر ویژگیهای فیزیکوشیمیایی آب رودخانه هراز. نشریه فنآوریهای نوین در توسعه آبزیپروری. سال 11، شماره 1، صفحات 51 تا 60.
8
عباسپور، م.، 1377. مهندسی محیط زیست. انتشارات دانشگاه آزاد اسلامی. 530 صفحه.
9
کائیدی، ط.؛ جعفریان، ح.؛ پاتیمار، ر.؛ هرسیج، م. و فرهنگی، م.، 1396. مطالعه تغییرات معیارهای کیفی آب کارگاه پرورش ماهی رنگینکمان Oncorhynchus mykiss (Walbaum, 1792). نشریه پژوهشهای ماهیشناسی کاربردی. دوره 5، شماره 4، صفحات 129 تا 138.
10
فدویحسینی، ه.؛ قمی، م.ر.؛ جمالزاده، ح.ر.؛ فغانیلنگرودی، ح.؛ جدیدهخانی، د. و حسندوست، م.، 1389. مقایسه فاکتورهای فیزیکی و شیمیایی آب قبل و بعد از مزارع پرورش ماهی قزلآلا در رودخانه دو هزار تنکابن. مجله علمی شیلات ایران. سال 4، شماره 2، صفحات 77 تا 83.
11
قانعساسانسرایی، ا.، 1383. شناسایی ساختار جمعیت ماکروبنتوزهای رودخانه چافرود در استان گیلان با توجه به برخی عوامل کیفی آب (در محدوده روستای اورمان ملال). پایاننامه کارشناسیارشد، دانشگاه تربیت مدرس. 98 صفحه.
12
کاظم زادهخواجویی، ا.؛ اسماعیلساری، ع. و قاسمپوری، م.، 1381. بررسی آلودگی ناشی از کارگاههای پرورش ماهی قزلآلا در رودخانه هراز. مجله علوم و فنون دریایی ایران. دوره 1، شماره 3، صفحات 27 تا 34.
13
میرزایی، م.؛ ریاحیبختیاری، ع.؛ سلمانماهینی، ع. و غلامعلیفرد، م.، 1392. آنالیز کیفیت فیزیکی و شیمیایی آب رودخانههای استان مازندران با استفاده از روشهای چندمتغیره آماری. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. دوره 23، شماره 108، صفحات 41 تا 52.
14
نادریجلودار، م.؛ اسماعیلیساری، ع.؛ احمدی، م.؛ سیف آبادی، ج. و عبدلی، ا.، 1385. بررسی آلودگی ناشی از کارگاههای پرورش ماهی قزلآلای رنگینکمان بر روی پارامترهای کیفی آب رودخانه هراز. علوم محیطی. سال 4، شماره 2، صفحات 21 تا 36.
15
APHA. 2005. Standard Methods for Examining of Water and Waste Water. 17th edition, Method 507, Washington
16
D.C. 531 p.
17
Adams, S.M., 2002. Biological indicators of aquatic ecosystem stress. American Fisheries Society. 656 p.
18
Bergheim, A. and Brinker, A., 2003. Effluent treatment for flow through systems and European Environmental Regulations.Aquacultural Engineering. Vol. 27, pp: 61-77.
19
Boaventura, R.; Pedro, A.M.; Coimbra, J. and Lencastre, E., 1997. Trout farm effluents Characterization and impact on the receiving: streams; Environmental Pollution. Vol. 95, No. 3, pp: 379-387.
20
Carney, E., 2009. Relative influence of lake age and watershed land use on tropic state and water quality of artificial lakes in Kansas, Lake Reserve Manage. pp: 199-207.
21
EPA. 1996. Quality criteria for waters, Office of Water Regulations and Standards Washington DC 20460. 395 p.
22
Hughes, B.D., 1978. The influence of factors other than pollution on the value of Shannon’s diversity index for benthic macroinvertebrates in streams. Water Research.Vol. 12, pp: 359-364.
23
Kelly, T.R.; Herida, J. and Mothes, J., 1998. Sampling of the Mackinaw River in central Illinois for physicochemical and bacterial indicators of pollution. Transaction of Illinois State Academy of Science. Vol. 91, pp: 145-154.
24
Khalik, W.M.A.; Abdullah, M.P.; Amerudin, N.A. and Padli, N., 2013. Physicochemical analysis on water quality status of Bertam river in Cameron Highlands. Journal of Materials and Environmental Science. Vol. 4, No. 4, pp: 488-495.
25
Loch, D.D.; West, J.L. and Perlmutter, D.G., 1999. The effect of trout farm effluent on taxa richness of benthic macroinvertebrates. Aquaculture. Vol. 147, pp: 37-55.
26
McNeely, R.N.; Neimanis, V.P. and Dwyer, L., 1979. Water quality sourcebook, A guide to water quality parameter, Ottawa: Inland Waters Directorate, Water Quality Branch. 89 p.
27
Mobin, M.N.; Islam, M.S.; Mia, M.Y. and Bakali, B., 2014. Analysis of Physicochemical Properties of the Turag river Water, Tongi, Gazipur in Bangladesh. Journal of Environmental Science and Natural Resources. Vol. 7, No. 1, pp: 27-33.
28
Noori, R.; Abdoli, M.A.; Ghasrodashti, A. and Ghazizade, M.J., 2009. Prediction of municipal solid waste generation with combination of support vector machine and principal component analysis: A case study of Mashhad. Environmental Progress and Sustainable Energy. Vol. 28, No. 2, pp: 249-256.
29
Selong, J.H. and Helfrich, L.A., 1998. Impact of trout culture effluent on water quality and biotic communities in Virginia Headwater streams. The progressive fish-culturist. Vol. 60, pp: 247-262.
30
Shrestha, S. and Kazama, F., 2007. Assessment of surface water quality using multivariate statistical techniques: A case study of the Fuji river basin, Japan. Environmental Modelling and Software. Vol. 22, No. 4, pp: 464-475.
31
Trojanowski, J., 1990. The effect of trout culture on water quality of Lupawa River. Polskie Archiwum Hydrobiologii PAHYA. Vol. 37, No. 3, pp: 383- 395.
32
Voelker, D.C. and Renn, D.E., 2000. Benthic invertebrates and quality of streambed sediments in the White River and selected tributaries in and near Indianapolis, Indiana. USGS Science for a Changing World. 55 p.
33
Zar, J.H., 1999. Biostatistical Analysis. 4th edition. Prentice Hall, Englewood Cliffs, New Jersey. 929 p.
34
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه تأثیر باکتریهای دارای توان پروبیوتیکی لاکتوباسیلوس پنتوسوس و لاکتوباسیلوس پلنتاروم بر میزان رشد و فعالیت آنزیمهای گوارشی در ماهی قزلآلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss)
در سالهای اخیر، استفاده از پروبیوتیکها در آبزیپروری بهمنظور ارتقای ایمنیزایی و مقاومت در برابر بیماریها افزایش یافته است. در این تحقیق باکتریهای با توان پروبیوتیکی لاکتوباسیلوس پنتوسوس و لاکتوباسیلوس پلنتاروم (در دو گروه با سه تکرار) بهمدت ۶۰ روز به غذای ماهیهای قزلآلای رنگینکمان اضافه شدند. ماهیهای به غذای یک گروه از ماهیها (با سه تکرار) که بهعنوان گروه شاهد درنظر گرفته شده بود پروبیوتیک افزوده نشد. در پایان دوره، ماهیهای قزلآلای رنگینکمان از نظر میزان رشد و آنزیمهای گوارشی مورد مطالعه قرار گرفتند. پس از ۶۰ روز، ماهیهایی که در رژیم غذایی خود دارای پروبیوتیک بودند، افزایش معنیداری از نظر میزان رشد ویژه (SGR)، میزان کارآیی پروتئین (PER) و درصد افزایش وزن (BWG) نسبت به گروه شاهد نشان دادند (0/05>p). ضریب تبدیل غذایی (FCR) در گروه شاهد بالاتر از دو گروه دیگر بود و اختلاف معنیداری با آنها داشت (0/05>p). در پایان این دوره، میزان آنزیمهای لیپاز، آمیلاز و تریپسین نسبت به گروه شاهد افزایش معنی داری را نشان دادند (0/05>p) ولی آلکالین فسفاتاز و پروتئاز اختلاف معنیداری نداشتند (0/05<p). از این تحقیق میتوان نتیجه گرفت که استفاده از باکتریهای لاکتوباسیلوس پلنتاروم و لاکتوباسیلوس پنتوسوس میتواند تاثیر مشخصی در میزان رشد و افزایش آنزیمهای گوارشی و کمک به هضم اجزای غذایی در ماهی قزلآلای رنگینکمان داشته باشد.
http://www.aejournal.ir/article_81392_a512d4ecef8a5d685dad3521823357f3.pdf
2018-09-23
175
184
پروبیوتیک
لاکتوباسیلوس
قزلآلای رنگین کمان
آنزیمهای گوارشی
امین
رنجبر
ar_dvm_2@yahoo.com
1
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران، صندوق پستی: 135
LEAD_AUTHOR
مهرزاد
مصباح
mehrmesbah@yahoo.com
2
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران، صندوق پستی: 135
AUTHOR
محمد رضا
تابنده
m.tabandeh@scu.ac.ir
3
گروه علوم پایه، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران، صندوق پستی: 135
AUTHOR
تکاور
محمدیان
t.mohammadian@scu.ac.ir
4
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران، صندوق پستی: 135
AUTHOR
داریوش
غریبی
d.gharibi@scu.ac.ir
5
گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران، صندوق پستی: 135
AUTHOR
مجتبی
علیشاهی
alishahim@scu.ac.ir
6
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران، صندوق پستی: 135
AUTHOR
رحمتیچی، ا.؛ مشکینی، س. و ابراهیمی، ه.، 1389. افزایش مقاومت ماهی قزلآلای رنگینکمان در برابر عفونت با آئروموناس هیدروفیلا و یرسینیا روکری با استفاده از لاکتوباسیلهای جدا شده از روده ماهی کپور معمولی. مجله دامپزشکی ایران. دوره 7، شماره 2، صفحات 33 تا 40.
1
ضیایینژاد، س.، 1382. بررسی تأثیر باکتریهای باسیلوس به عنوان پروبیوتیک بر رشد، بازماندگی و تغییرات آنزیمهای گوارشی در مراحل لاروی و پست لاروی میگوی سفید هندی (Fenneropeaneus indicus). طرح تحقیقاتی دانشگاه زابل.
2
قلجاییفرد، ا.؛ خارا، ح. و شناورماسوله، ع.، 1395. اثر باکتری Lactobacillus plantarum (KC426951) جداسازی شده از روده قزلآلای رنگینکمان استان گیلان بر فاکتورهای رشد، فلور باکتریایی روده و ترکیب شیمیایی لاشه بچهماهی قزلآلای رنگین کمان (Oncorhynchus mykiss). فصلنامه علمی پژوهشی علوم و فنون شیلات. دوره5، شماره 2، صفحات 111 تا 124.
3
کاظمی، ا.؛ راستیاننسب، ا.؛ گندمکار، ح.؛ مهدوی، ج. و محمودی، ر.، 1395. تاثیر پروبیوتیک باکتوسل بر برخی فاکتورهای رشد ماهی قزلآلای رنگینکمان (Oncorhynchus mykiss). فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری. سال 8، شماره 1، صفحات 215 تا 222.
4
Ahmadnia, H.R.; Farhangi, M.; Rafiee, G.H.; Noori, F. and Safari, O., 2011. Effects of different levels of Bacillus subtilis and Bacillus licheniformis on digestive enzyme activities in Artemia urmiana. Asian-Pacific Aquaculture Conference. Kochi, India. pp: 17-20.
5
Aly, S.M.; Abdel-Galil Ahmed, Y.; Abdel-Aziz Ghareeb, A. and Mohamed, M.F., 2008. Studies on Bacillus subtilis and Lactobacillus acidophilus, as potential probiotics, on the immune response and resistance of Tilapia nilotica (Oreochromis niloticus) to challenge infections. Fish Shellfish Immunol. Vol. 25, pp: 128-136.
6
Arabzadeh, P.; Javadi, A.; Mirzaei H. and Khatibi, S.A., 2011. Effect of Dietary Probiotic on Survival and Growth of Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss). Advances in Environmental Biology. Vol. 5, No. 6, pp: 1162-1165.
7
Askarian, F.; Matinfar, A.; Kousha, A.; Bahmani, M.; Khorshidi, K.; Shenavar, A. and Ringø, E., 2008. Diversity or Lactic Acid Bacteria in the Gastrointestinal Tracts of Reared Beluga (Huso huso) and Persian Sturgeon (Acipenser persicus): A Comparative Study. Journal of Fisheries & Aquatic Science. Vol. 3, No. 5, pp: 302-311.
8
Bagheri, T.; Hedayati, S.A.; Yavari, V.; Alizade, M. and Farzanfar, A., 2008. Growth, survival and gut microbial load of rainbow trout (Onchorhynchus mykiss) fry given diet supplemented with probiotic during the two months of first feeding. Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 8, pp: 43-48.
9
Bernfeld, P., 1951. Amylases α and β. In methods in enzymology, vol.1 (Colowick, P & Kaplan, N.O., eds).
10
New York: Academic press. pp: 149-157.
11
Birkbeck, T.H. and Ringo, E., 2005. Pathogenesis and the gastrointestinal tract of growing fish. In: Holzapfel, W., Naughton, P. (Eds.), Microbial Ecology in Growing Animal. Elsevier, Edinburgh, UK. pp: 208-234.
12
Bradford, M.M., 1976. A rapid and sensitive method for the quantitation of microgram quantities of protein utilizing the principle of protein dye binding. Analytical biochemistry. Vol. 72, pp: 248-254.
13
Cahu, C.L.; Zambonino Infante, J.L.; Quazuguel, P. and Le Gall, M.M., 1999. Protein hydrolysate vs. fish meal in compound diets for 10-day old sea bass Dicentrarchus labrax larvae. Aquaculture. Vol. 171, pp: 109-111.
14
Cerezuela, R.; Meseguer, J. and Ángeles Esteban, M., 2013. Effects of dietary inulin, Bacillus subtilis and microalgae on intestinal gene expression in gilthead seabream (Sparus aurata L.). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 34, pp: 843-848.
15
Chang, A.S.C.; Hashim, R.; Chow-Yang, L. and Ali, A.B., 2002. Partial characterization and activities of proteases from the digestive tract of discus fish, Symphysodon aeguifasciata. Aquaculture. Vol. 203,
16
pp: 321-333.
17
Crane R.K.; Boge G. and Rigal A., 1979. Isolation of brush border membranes in vesicular form from the intestinal spiral valve of the small dogfish (Scyliorhinus canicula). Biochimica et Biophysica Acta (BBA) Biomembranes. Vol. 554, pp: 264-267.
18
Dalmo R.A.; Ingebrigtsen K. and Bøgwald J., 1997. Non specific defence mechanisms in fish, with particular reference to the reticuloendothelial system (RES). J Fish Dis. Vol. 20, pp: 241-273.
19
Daniels, C.L.; Merrifield, D.L.; Boothroyd, D.P.; Davies, S.J.; Factor, J.R. and Arnold, K.E., 2010. Effect of dietary Bacillus spp. and mannan oligosaccharides (MOS) on European lobster (Homarus gammarus L.) larvae growth performance, gut morphology and gut Microbiota. Aquaculture. Vol. 304, No. 1-4, pp: 49-57.
20
Dimitroglou A.; Merrifield D.L.; Carnevali O.; Picchietti S.; Avella M. and Daniels C., et al., 2011. Microbial manipulations to improve fish health and production a Mediterranean perspective. Fish Shellfish Immunol. Vol. 30, pp: 1-16.
21
Doggett A. and Harris J.E., 1987. The ontogeny of the gut-associated lymphoid tissue in Oreochromis mossambicus. J Fish Biol, 31:23-7.
22
Doos Ali Vand, Z.; Alishahi, M. and Tabandeh, M.R., 2014. Effects of different levels of Lactobacillus casei as probiotic on growth performance and digestive enzymes activity of Barbus gryprus. International Journal of Bioscience. Vol. 4, No. 7, pp: 106-116.
23
Ellis A.E., 2001. Innate host defence mechanisms of fish against viruses and bacteria. Dev Comp Immunol. Vol. 25, pp: 827-839.
24
Erlanger, B.F.; Kokowsky, N. and Cohen, W., 1961. The preparation and properties of two new chromogenic substrates of trypsin. Arch Biochem Biophys. Vol. 95, pp: 271-278.
25
Essa, M.A.; El-Serafy, S.S.; El-Ezabi, M.M.; Daboor, S.M.; Esmael, N.A. and Lall, S.P., 2010. Effect of different dietary probiotics on growth, feed utilization and digestive enzymes activities of Nile Tilapia, Oreochromis niloticus. Journal of the Arabian Aquaculture Society. Vol. 5, No. 2, pp: 143-161.
26
Giri, S.S.; Sukumaran, V. and Oviya, M., 2013. Potential probiotic Lactobacillus plantarum VSG3 improves the growth, immunity, and disease resistance of tropical freshwater fish, Labeo rohita. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 34, No. 2, pp: 660-666.
27
Irianto, A. and Austin, B., 2002. Probiotics in aquaculture. J Fish Dis. Vol. 25, pp: 633-642.
28
Kesarcodi-Watson, A.; Kaspar, H.; Lategan, M.J. and Gibson, L., 2008. Probiotics in aquaculture: The need, principles and mechanisms of action and screening processes. Aquaculture. Vol. 274, pp: 1-14.
29
Korkea‐aho, T.; Papadopoulou, A.; Heikkinen, J.; Von Wright, A.; Adams, A.; Austin, B. and Thompson,
30
K., 2012. Pseudomonas M162 confers protection against rainbow trout fry syndrome by stimulating immunity. Journal of Applied Microbiology. Vol. 113, pp: 24-35.
31
Kuz’mina, V.; Shekovtsova, N. and Bolobonina, V., 2010. Activity dynamics of proteinases and glycosidases of fish chyme with exposure in fresh and brackish water. Biology Bulletin. Vol. 37, pp: 605-611.
32
Marlida, R.; Agus Suprayudi, M. and Widanarni, Harris, E., 2014. Isolation, selection and application of probiotic bacteria for improvement the growth performance of humpback grouper (Cormileptes altivelis). International Journal of Sciences: Basic and Applied Research (IJSBAR). volume 16, No 1, pp 364-379.
33
Merrifield D.L.; Dimitroglou A.; Foey A.; Davies S.J.; Baker R.T.M. and Bøgwald J, et al., 2010. The current status and future focus of probiotic and prebiotic applications for salmonids. Aquaculture. Vol. 302, 118 p.
34
Mohammadian, T.; Alishahi, M.; Tabandeh, M.R.; Ghorbanpoor, M.; Gharibi, D.; Tollabi, M. and Rohanizade, S., 2016. Probiotic effects of Lactobacillus plantarum and L. delbrueckii ssp. bulguricus on some immune-related parameters in Barbus grypus. Aquaculture International. pp: 1-18.
35
Mulder, I.E.; Wadsworth, S. and Secombes, C.J., 2007. Cytokine expression in the intestine of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) during infection with Aeromonas salmonicida. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 23,
36
pp: 747-759.
37
Naseri, S.; Khara, H. and Shakoori, M., 2013. Effects of probiotics and Fe ion on the growth and survival and body composition of rainbow trout, Oncorhynchusmykiss (Walbaum, 1792) frys, Journal of Applied Animal Research. Vol. 41, No. 3, pp: 318-325.
38
Nikoskelainen, S.; Ouwehand, A.; Salminen, S. and Bylund, G., 2001. Protection of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) from furunculosis by Lactobacillus rhamnosus. Aquaculture. Vol. 198, pp: 229-236.
39
Pérez, T.; Balcázar, J.L.; Ruiz-Zarzuela, I.; Halaihel, N.; Vendrell, D. and de Blas, I., 2010. Host-microbiota interactions within the fish intestinal ecosystem. Mucosal Immunol. Vol. 4, pp: 355-360.
40
Pérez-Sánchez, T.; Balcázar, J.l.; Merrifield, D.L.; Carnevali, O.;Gioacchini, G.; de Blas, I. and Ruiz Zarzuela, I., 2011. Expression of immune-related genes in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) induced by probiotic bacteria during Lactococcus garvieae infection. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 31, pp: 196-201.
41
Planas, M.; Vazquez, J.A.; Marques, J.; Peres-Lomba, R.; Gonzalez M.P. and Murado, M., 2004. Enhancement of rotifer (Brachionus plicatilis) growth by using terrestrial lactic acid bacteria. Aquaculture. Vol. 240, pp: 313-329.
42
Ringø, E. and Gatesoupe, F.J., 1998. Lactic acid bacteria in fish: a review. Aquaculture. Vol. 160, pp: 177-203.
43
Ringø, E.; Myklebust, R.; Mayhew, T. and Olsen, R., 2007. Bacterial translocation and pathogenesis in the digestive tract of larvae and fry. Aquaculture. Vol. 268, pp: 251-64.
44
Rungruangsak-Torrissen, K.; Rustad, A.; Sunde, J.; Eiane, S.A.; Jensen, H.B.; Opstvedt, J.; Nygrd, E.; Samuelsen, T.A.; Mundheim, H.; Luzzana, U. and Venturini, G., 2002. In vitro digestibility based on fish crude enzyme extract for prediction of feed quality in growth trials. J Sci Food Agric. Vol. 82, pp: 644-654.
45
Salas-Leiton, E.; Anguis, V.; Martín-Antonio, B.; Crespo, D.V.; Planas, J.; Infante, C.; Cañavate, J. and Manchado, M., 2010. Effects of stocking density and feed ration on growth and gene expression in the Senegalese sole (Solea senegalensis): Potential effects on the immune response. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 28, pp: 296-302.
46
Soltani, M.; Mousavi, H.A. and Mirzargar, S., 2009. Status of aquaculture health management in the Islamic Republic of Iran, 1th international congress on aquatic animal, Islamic Republic of Iran, Tehran. pp: 27-28.
47
Suzer, C.; Coban, D.; Kamaci, H. O.; Saka, S.; Firat, K.; Otgucuoglu, O. and Kucuksari, H., 2008. Lactobacillus spp. Bacteria as probiotics in gilthead sea bream (Sparus aurata, L.) larvae: Effects on growth performance and digestive enzyme activities. Aquaculture. Vol. 280, pp: 140-145.
48
Talpur, A.D.; Ikhwanuddin, M.; Abdullah, M.D.D. and Ambok Bolong, A.M., 2013. Indigenous Lactobacillus plantarum as probiotic for larviculture of blue swimming crab, Portunus pelagicus (Linnaeus, 1758): Effects on survival, digestive enzyme activities and water quality. Aquaculture. Vol. 416, pp: 173-178.
49
Tovar-Ramırez, D.; Zambonino Infante, J.; Cahu, C.; Gatesoupe, F. and Vázquez-Juárez, R., 2004 Influence of dietary live yeast on European sea bass (Dicentrarchus labrax) larval development. Aquaculture. Vol. 234, pp: 415-427.
50
Tuan, T.; Duc, P. and Hatai, K., 2013. Review Article: Overview of the use of probiotics in aquaculture. International Journal of Research in Fisheries and Aquaculture. Vol. 3, No. 3, pp: 89-97.
51
Vendrell, D.; Luis Balcázar, J.; de Blas, I.; Ruiz-Zarzuela, I.; Gironés, O. and Luis Múzquiz, J., 2008. Protection of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) from lactococcosis by probiotic bacteria. Comparative immunology, microbiology and infectious diseases. Vol. 31, pp: 337-345.
52
Vijavabaskar, P. and Somasundaram, S., 2008. Isolation of bacteriocin producing lactic acid bacteria from fish gut and probiotic activity against common fresh water fish pathogen Aeromonas hydrophila. Biotechnology. Vol. 7, No. 1, pp: 124-128.
53
Vine, N. G.; Leukes, W.D.; Kaiser, H.; Daya, S.; Baxter, J. and Hecht, T., 2004. Competition for attachment of aquaculrue candidate probiotic and pathogenic bacaetia on fish interstinal mucus. Journal of fish disease. Vol. 27, pp: 319-326.
54
Wache, Y.; Auffray, F.; Gatesoupe, F.J.; Zambonino,J.; Gayet, V.; Labbe, L. and Quentel, C., 2006. Cross effects of the strain of dietary Saccharomyces cerevisiae and rearing conditions on the onset of intestinal microbiota and digestive enzymes in rainbow trout, Onchorhynchus mykiss, fry. Aquaculture. Vol. 258, pp: 470-478.
55
Worthington, C.C., 1991. Worthington.manual related Biochemical. 3th Edition. Freehold, New Jerse. pp: 80-85.
56
Zhao, J.; Liu, Y.; Jiang, J.; Wu, P.; Chen, G.; Jiang, W.; Li, S.; Tang, L.; Kuang, S.; Feng, L. and Zhou, X., 2012. Effects of dietary isoleucine on growth, the digestion and absorption capacity and gene expression in hepatopancreas and intestine of juvenile Jian carp (Cyprinus carpio var. Jian). Aquaculture. pp: 117-128.
57
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات مولتی آپسوزایم و پروبیوتیک پدیوکوکوس اسیدلاکتیکی برشاخص های رشد و شاخص های بیوشیمیایی خون در ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio)
در اینآزمایشاثر مولتی آنزیم آپسوزایم و پروبیوتیک پدیوکوکوس اسیدلاکتیکی به صورت مجزا و ترکیبی بر شاخص های رشد و برخی فاکتورهای بیوشیمیایی سرم خون در ماهی کپور معمولی (Cyprinus carpio) مورد بررسی قرار گرفت. بدین منظور 216 قطعه ماهی کپور با میانگین وزنی 0/21± 27/52 گرم به مدت 8 هفته با جیره های آزمایشی تغذیه شدند. آزمایش در 6 تیمار و هر تیمار با سه تکرار شامل پروبیوتیک (0/1 درصد)، مولتیآنزیم آپسوزایم (0/025 درصد)، مولتیآنزیم آپسوزایم (0/05 درصد)، ترکیب پروبیوتیک (0/1 درصد) و مولتیآنزیم آپسوزایم (0/025 درصد)، ترکیب پروبیوتیک (0/1 درصد) و مولتیآنزیم آپسوزایم (0/05 درصد) و گروه شاهد طراحی گردید. در انتهای دوره شاخص های رشد و فاکتورهای بیوشیمیایی خون گلوکز، پروتئین کل و آلبومین با استفاده از روش اسپکتروفتومتری بررسی شد. نتایج نشان داد در شاخص میانگین وزن ثانویه، درصد افزایش وزن و نرخ رشد ویژه اختلاف معنی داری بین تیمارها مشاهده شد (0/05>P)، در این شاخص ها در تیمار حاوی پروبیوتیک اختلاف معنی داری با تیمار شاهد مشاهده نشد ولی در تیمارهای حاوی مولتی آنزیم با افزایش سطح مولتی آنزیم به طور معنی داری افزایش یافت (0/05>P). هم چنین در تیمارهای حاوی ترکیب مولتی آنزیم و پروبیوتیک این شاخص ها افرایش معنی داری نسبت به تیمارهای مجزای پروبیوتیک و مولتی آنزیم نشان داد (0/05>P). ضریب تبدیل غذایی با افزایش سطح مولتی آنزیم و در جیره های ترکیب مولتی آنزیم و پروبیوتیک به طور معنی داری نسبت به جیره حاوی پروبیوتیک و شاهد کاهش یافت (0/05>P). شاخص درصد بقا اختلاف معنی داری بین تیمارها نشان نداد (0/05<P). در شاخص های بیوشیمیایی خون تفاوتی بین میزان گلوکز و پروتئین کل در جیره شاهد و جیره های تغذیه شده با سطوح مختلف مولتی آنزیم و ترکیب مولتی آنزیم و پروبیوتیک مشاهده نشد (0/05<P). اما با استفاده از پروبیوتیک و جیره هایحاویسطوحمختلف مولتی آنزیم و جیره های ترکیبی میزان آلبومین نسبت به شاهد به طور معنی داری افزایش یافت (0/05>P). نتایج این آزمایش نشان داد که استفاده از مولتی آنزیم و پروبیوتیک می تواند بر قاکتورهای رشد و بیوشیمیایی خون ماهی تاثیرگذاشته و باعث بهبود وضعیت رشد و تغذیه ماهی کپور گردد.
http://www.aejournal.ir/article_81413_c0cbb660e3691c1b69a8c37ff5bed92b.pdf
2018-09-23
185
190
آپسوزایم
پروبیوتیک
کپور
خون
رشد
علی
کریمی
karimia@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
محمدرضا
ایمانپور
imanpour@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
رقیه
صفری
roghi_safari@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
LEAD_AUTHOR
حسین
حسینی فر
hoseinifar@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
علی
جافر
jafar@yahoo.com
5
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
عادلیان، م.؛ ایمانپور، م.ر.؛ تقی زاده، و. و مازندرانی، م.، 1395. استفاده از مولتی آنزیم ناتوزیم در جیره ماهی کپورمعمولی و اثرات آن بر شاخص های رشد برخی فاکتورهای بیوشیمیایی خون. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 8، شماره 2، صفحات 207 تا 214.
1
قاسم زاده،پ.؛ زمینی،ع.ع. و وهاب زاده، ح.، 1396. بررسی اثرات سطوح مختلف مولتی آنزیم combo بر کارایی تغدیه، عملکرد رشد و آنزیم های کبدی بچه تاس ماهیان سیبری پرورشی (Acipenser baerii). پنجمین کنفرانس ملی ماهی شناسی ایران. صفحات 231 تا 238.
2
قبادی، ش.؛ متین فر، ع.؛ نظامی، ش.ع. و سلطانی، م.، 1388. عملکرد مولتی آنزیم اویزایم بر جایگزینی آرد ماهی با آرد سویا و تاثیر آن بر رشد و بازماندگی ماهی قزل آلا. مجله شیلات دانشگاه آزاد آزادشهر. سال 3، شماره ، صفحات 2 تا 11.
3
Adeola, O. and Cowieson, A.J., 2011. Board-invited review: Opportunities and challenges in using exogenous enzymes to improve nonruminant animal production. Journal of animal science. Vol. 89, No. 10, pp: 3189-3218.
4
Adeoye, A.A.; Yomla, R.; Jaramillo-Torres, A.; Rodiles, A.; Merrifield, D.L. and Davies, S.J., 2016. Combined effects of exogenous enzymes and probiotic on Nile tilapia (Oreochromis niloticus) growth, intestinal morphology and microbiome. Aquaculture. Vol. 463, pp: 61-70.
5
Ai, Q.; Xu, H.; Mai, K.; Xu, W.; Wang, J. and Zhang,W., 2011. Effects of Dietary Supplementation of Bacillus subtilis and Fructooligosaccharide on Growth Performance, Survival, Non-Specific Immune Response and Disease Resistance of Juvenile Large Yellow Croaker, Larimichthys crocea. Aquaculture. Vol. 317, pp: 155-161.
6
Bedford, M. and Cowieson, A., 2012. Exogenous enzymes and their effects on intestinal microbiology. Animal Feed Science Technology. Vol. 173, pp: 76-85.
7
Debidhan, B.C.; Meena, D.K.; Behera, B.K.; Das, P.; Mohapatra, P.D. and Sharma, A.P., 2014. Probiotics in fish and shellfish culture: immune modulatory and ecophysiological responses. Fish physiology and biochemistry. Vol. 40, No. 3, pp: 921-971.
8
Francis, G.; Makkar, H.P. and Becker, K., 2001. Antinutritional factors present in plant-derived alternate fish feed ingredients and their effects in fish. Aquaculture. Vol. 199, No. 3-4, pp: 197-227.
9
Ghomi, M.R.; Shahriari, R.; Langroudi, H.F.; Nikoo, M.; and von Elert, E., 2012. Effects of exogenous dietary enzyme on growth, body composition, and fatty acid profiles of cultured great sturgeon (Husohuso) fingerlings. Aquaculture international. Vol. 20, No. 2, pp: 249-254.
10
Ghosh, S.; Sinha, A. and Sahu, C., 2007. Effect of probiotic on reproductive performance in female livebearing ornamental fish. Aquaculture Research. Vol. 38, No. 5, pp: 518-526.
11
Kumar, V.; Sinha, A.K.; Makkar, H.P.S.; De Boeck, G. and Becker, K., 2012. Phytate and phytase in fish nutrition. Journal of Animal Physiology and Animal Nutrition. Vol. 96. No. 3, pp: 335-364.
12
Mohammadbeygi, M.; Imanpour, M.R.; Taghizadeh, V. and Shabani, A., 2012. The Application of Exogenous $-Glucanase in Barley Based Diet and its Effects on Some Hematological Parameters of Common Carp (Cyprinus carpio). World Applied Sciences Journal. Vol. 20. No. 11, pp: 1466-1471.
13
Nayak, S.K., 2010. Probiotics and immunity: a fish perspective. Fish and shellfish immunology. Vol. 29, No. 1, pp: 2-14.
14
Ray, A.; Ghosh, K. and Ringø, E., 2012. Enzyme-producing bacteria isolated from fish gut: a review. Aquaculture Nutrition. Vol. 18, pp: 465-492.
15
Taridashti, F.; Zare, A.; Delafkar, Kh. and Azari Takami, Gh., 2017. Effects of probiotic Pediococcus acidilactici on growth performance, survival rate, and stress resistance of Persian sturgeon (Acipenser persicus). Journal of Applied Aquaculture.
16
Zamini, A.; Kanani, H.G.; Esmaeili, A.; Ramezani, S. and Zoriezahra, S.J., 2014. Effects of two dietary exogenous multi-enzyme supplementation, Natuzyme® and beta mannanase (Hemicell®), on growth and blood parameters of Caspian salmon (Salmo trutta caspius). Comparative Clinical Pathology. Vol. 23, No. 1. pp: 187-192.
17
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی کیفیت آب و رشد بچه ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) تحت تغذیه با جیره های حاوی سطوح مختلف پروتئین در سیستم بیوفلوک
این مطالعه جهت ارزیابی اثرات بیوفلوک روی بهبود کیفیت آب و عملکرد رشد بچه ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio) تغذیه شده با جیره های حاوی مقادیر مختلف پروتئین به میزان 23، 27، 31 و 35 درصد و تیمار آزمایشی بدون بیوفلوک در یک دوره 8 هفته صورت گرفت. متوسط مقدار اکسیژن (5/33) و( pH (8/05 در تیمارها بررسی شده و در تیمار شاهد بیش تر از تیمارهای بیوفلوکی بود. غلظت جامدات معلق کل در تیمارهای بیوفلوکی به طور معنی داری بالاتر از تیمار شاهد بود (0/05>P) کیفیت خوب آب با توسعه بیوفلوک از طریق افزودن ملاس چغندرقند در طی آزمایش غذایی نگه داشته شد. با گذشت زمان و توسعه بیوفلوک در تیمارهای بیوفلوکی، مقدار آمونیاک، نیترات و نیتریت از هفته چهارم آزمایش شروع به کاهش نمود و در انتهای آزمایش مقدار آن ها در تیمارهای بیوفلوکی کم تر از تیمار شاهد شده بود. رشد براساس درصد وزن حاصله و ضریب رشد ویژه در بچه ماهی های تغذیه شده با جیره های حاوی 27 و 31 درصد پروتئین به طور معنی داری بالاتر از بچه ماهی های تیمار شاهد بود که با جیره حاوی 35% پروتئین تغذیه کرده بودند (0/05>P). در مجموع نتایج این مطالعه نشان داد که در سیستم بیوفلوک، تغذیه ماهی کپورمعمولی با جیره حاوی 27 و 31 درصد پروتئین، بهترین نتیجه را در بهبود کیفیت آب و عملکرد رشد دارد.
http://www.aejournal.ir/article_81705_8bbf09a9f8c6922a0da67089f4775b94.pdf
2018-09-23
191
198
کیفیت آب
راندمان رشد
کپور معمولی
جیره پروتئینی
سیستم بیوفلوک
مهسا
محمودی خوش دره گی
mahsamahmoudi@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، صندوق پستی: 487-49175
LEAD_AUTHOR
عبدالمجید
حاجی مرادلو
ahajimoradloo@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، صندوق پستی: 487-49175
AUTHOR
بهروز
دستار
dastar392@yahoo.com
3
گروه تغذیه دام و طیور، دانشکده علوم دامی، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، صندوق پستی: 487-49175
AUTHOR
بخشی، ف.؛ ملکزادهویایه، ر. و حسیننجدگرامی، آ.، 1393. بررسی بازدهی استفاده از سیستم تولید توده زیستی (Biofloc) در پرورش متراکم ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio). فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری. دوره 6، شماره 3، صفحات 45 تا 52.
1
عظیمی، ع.؛ جعفریان، ح.؛ هرسیج، م.؛ قلیپور، ح. و پاتیمار، ر.، 1395. تأثیر نسبت های مختلف کربن به نیتروژن بر پارامترهای کیفی آب و عملکرد رشد بچه ماهیان کپورمعمولی (Cyprinus carpio) در سیستم بیوفلاک. نشریه توسعه آبزی پروری. سال 10، شماره 4، صفحات 75 تا 89.
2
AOAC. 2005. Official Methods of Analysis . Association of Official Analytical Chemists, Gaithersburg, MD, USA.
3
Avnimelech, Y., 1999. Carbon/nitrogen ratio as control element in aquaculture systems. Aquaculture. Vol. 176, No. 3-4, pp: 227-235.
4
Avnimelech, Y., 2006. Bio-filters: the need for a new comprehensive approach. Aquacultural Engineering. Vol. 34, No. 3, pp: 172-178.
5
Avnimelech, Y., 2012. Biofloc Technology - A Practical Guide Book, 2nd ed. The World Aquaculture Society. Baton Rouge, Louisiana, EUA. 272 P.
6
Avnimelech, Y.; Mozes, N. and Weber, B., 1992. Effects of aeration and mixing on nitrogen and organic matter transformations in simulated fish ponds. Aquaculture Engineering. Vol. 11, No. 3, pp: 157-69.
7
Azimi, M.E. and Little, D.C., 2008. The biofloc technology (BFT) in indoor tanks: water quality, biofloc composition, and growth and welfare of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture. Vol. 283, No. 1-4, pp: 29-35.
8
Azimi, M.E.; Little, D.C. and Bron, J.E., 2008. Microbial protein production in activated suspension tanks manipulating C: N ratio in feed and the implications for fish culture. Bioresource Technology. Vol. 99, No. 9, 3590-3599.
9
Burford, M.A.; Thompson, P.J.; McIntosh, R.P.; Bauman, R.H. and Pearson, D.C., 2004. The contribution of flocculated material to shrimp (Litopenaeus vannamei) nutrition in a high-intensity, zero-exchange system. Aquaculture. Vol. 232, No. 1-4, pp: 525-537.
10
Correia, E.S.; Wilkenfeld, J.S.; Morris, T.C.; Wei, L.; Prangnell, D.I. and Samocha, T.M., 2014. Intensive nursery production of the Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei using two commercial feeds with high and low protein content in a biofloc-dominated system. Aquacultural Engineering. Vol. 59, pp: 48-54.
11
Crab, R., 2010. Bioflocs technology: an integrated system for the removal of nutrients and simultaneous production of feed in aquaculture. PhD thesis, Ghent University. 178 P.
12
Crab, R.; Avnimelech, Y.; Defoirdt, T.; Bossier, P. and Verstraete, W., 2007. Nitrogen removal techniques in aquaculture for a sustainable production. Aquaculture. Vol. 270, No. 1-4, pp: 11-14.
13
Crab, R.; Kochva, M.; Verstraete, W. and Avnimelech, Y., 2009. Bio-flocs technology application in over-wintering of tilapia. Aquacultural Engineering. Vol. 40, pp: 105-112.
14
Ebeling, J.M. and Timmons, M.B., 2007. Stoichiometry of ammonia-nitrogen removal in zero-exchange systems. World Aquaculture. Vol. 38, No. 2, pp: 22-25.
15
Goimier, Y.; Pascual, C.; Sánchez, A.; Gaxiola, G.; Sánchez, A. and Rosas, C., 2006. Relation between reproductive, physiological, and immunological condition of Litopenaeus setiferus pre-adult males fed different dietary protein levels. Animal Reprod Science. Vol. 92, pp: 193-208.
16
Gujer, W. and Jenkins, D., 1974. A nitrification model for contact stabilization activated sludge process. Water Research. Vol. 9, No. 5-6, pp: 561-566.
17
Gutierrez-Wing, M.T. and Malone, R.F. 2006. Biological filters in aquaculture: trends and research directions for freshwater and marine applications. Aquacultural Engineering. Vol. 34, No. 3, pp: 163-171.
18
Hargreaves, J.A., 2006. Photosynthetic suspended-growth systems in aquaculture. Aquacultural Engineering. Vol. 34, No. 3, pp: 344-363.
19
Haridas, H.; Verma, A.K.; Rathore, G.; Prakash, C.; Sawant, P.B. and Babitha, Rani, A.M., 2017. Enhanced growth and immune-physiological response of Genetically Improved Farmed Tilapia in indoor biofloc units at different stocking densities. Aquaculture Research. Vol. 48, No. 8, pp: 4364-4355.
20
Kureshy, N. and Davis, D.A., 2002. Protein requirement for maintenance and maximum weight gain for the Pacific white shrimp, Litopenaeus vannamei. Aquaculture. Vol. 204, No. 1-2, pp: 125-143.
21
Little, D.C.; Murray, F.J.; Azim, E.; Leschen, W.; Boyd, K.; Watterson, A. and Young, J.A., 2008. Option for producing a warm water fish in the UK: limit to green growth? Trends in Food Science and Technology. Vol. 19, No. 5, pp: 255-264.
22
Luo, G.Z.; Avnimelech, Y.; Pan, Y.F. and Tan, H.X., 2013. Inorganic nitrogen dynamics in sequencing batch reactors using bioflocs technology to treat aquaculture sludge. Aquaculture Engineering. Vol. 52, pp: 73-79.
23
Luo, G.; Wang, C.; Liu, W.; Sun, D.; Li, L. and Tan, H., 2014. Growth, digestive activity, welfare, and partial cost-effectiveness of genetically improved farmed tilapia (Oreochromis niloticus) cultured in a recirculating aquaculture system and an indoor biofloc system. Aquaculture. Vol. 422-423, pp: 1-7.
24
Luz, R.K.; Martinez-Alvarez, R.M.; De Pedro, N. and Delgado, N., 2008. Growth, Food intake and metabolic adaptations in gold fish (Carassius auratus) exposed to different salinities. J of Aquaculture. Vol. 276, pp: 171-178.
25
Malone, R.F.; Begeron, J. and Cristina, C.M., 2006. Linear versus Monod representation of ammonia oxidation rates in oligotrophic recirculating aquaculture systems. Aquacultural Engineering. Vol. 34, No. 3, pp: 214-223.
26
Najdegerami, E.; Bakhshi, F. and Bagherzadeh Lakani, F., 2016. Effects of biofloc on growth performance, digestive enzyme activities and liver histology of common carp (Cyprinus carpio L.) fingerlings in zero-water exchange system. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 42, No. 2, pp: 457-465.
27
Olah, J.; Sinha, R.P.; Ayyappan, S. and Purushothaman, C.S., 1987. Adheyshyams sediment consumption in tropical undrainable fish ponds. International Review of Hydrobiology. Vol. 72, No. 3, pp: 297-305.
28
Pascual, C.; Zenteno, E.; Cuzon, G.; Sánchez, A.; Gaxiola, G.; Taboada, G.; Suárez, J.; Maldonado, T. and Rosas, C., 2004. Litopenaeus vannamei juveniles energetic balance and immunological response to dietary protein. Aquaculture. Vol. 236, No. 1-4, pp: 431-450.
29
Piedrahita, R.H., 2003. Reducing the potential environmental impact of tank aquaculture effluents through intensification and recirculation. Aquaculture. Vol. 226, No. 1-4, pp: 35-44.
30
Poleo, G.; Aranbarrio, J.V.; Mendoza, L. and Romero, O., 2011. Cultivo de cachama blanca en altas densidades y en dos sistemas cerrados. PesquisaAgropecuáriaBrasileira. Vol. 46, No. 4, pp: 429-437.
31
Schneider, O.; Sereti, V.; Eding, E.H. and Verreth, J.A.J., 2007. Heterotrophic bacterial production on solid fish waste: TAN and nitrate as nitrogen source under practical RAS conditions. Bioresource Technology. Vol. 98, No. 10, pp: 1924-1930.
32
Schneider, O.; Sereti, V.; Machiels, M.A.M.; Eding, E.H. and Verreth, J.A.J., 2006. The potential of producing heterotrophic bacterial biomass on aquaculture waste. Water Research. Vol. 40, No. 14, pp: 2684-2694.
33
Schryver, P.D.; Crab, R.; Defoirdt, T.; Boon, N. and Verstraete, W., 2008. The basics of bio-flocs technology: The added value for aquaculture. Aquaculture. No.277, No. 3-4, pp: 125-137.
34
Sharma, B. and Ahlert, R.C., 1977. Nitrification and nitrogen removal. Water Research. Vol. 11, pp: 897-925.
35
Sun, Y.; Zhang, S.; Chen, J and Song, J., 2001. Supplement and consumption of dissolved oxygen and their seasonal variations in shrimp pond. Marine Science Bulletin. Vol. 3, No. 2, pp: 89-96.
36
Tacon, A.G.J.; Cody, J.J.; Conquest, L.D.; Divakaran, S.; Forster, I.P. and Decamp, O.E., 2002. Effect of culture system on the nutrition and growth performance of Pacific white shrimp Litopenaeus vannamei (Boone) fed different diets. Aquaculture Nutrition. Vol. 8, No. 2, pp: 121-137.
37
Tchobanoglous, G.; Burton, F.L. and Stensel, H. D., 2003. Wastewater engineering treatment and reuse. McGraw-Hill, Boston, Massachusetts, USA. 1408 P.
38
Twarowska, J.G.; Westerman, P.W. and Losordo, T.M., 1997. Water treatment characterization evaluation of an intensive recirculating fish production system. Aquaculture Engineering. Vol. 16, No. 3, pp: 133-147.
39
Visscher, P.T and Duerr, E.O., 1991. Water quality and microbial dynamics in shrimp ponds receiving bagase-based. Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 22, No. 1, pp: 65-76.
40
Wang, J.K., 2003. Conceptual design of a microalgae-based recirculating oyster and shrimp system. Aquaculture Engineering. Vol. 28, No. 1-2, pp: 37-46.
41
Wasielesky, W.; Atwood, H.; Stokes, A. and Browdy, C.L., 2006. Effect of natural production in a zero exchange suspended microbial floc-based super-intensive culture system for white shrimp Litopenaeus vannamei. Aquaculture. Vol. 258, No. 1-4, pp: 396-403.
42
Watanabe, W.O.; Ernst, D.H.; Chasar, M.P.; Wicklund, R.I. and Olla, B.L., 1993. The effects of temperature and salinity on growth and feed utilization of juvenile, sex-reversed male Florida red tilapia cultured in a recirculating system. Journal of Aquaculture. Vol. 112, pp: 309-320.
43
Widanarni, Ekasari, J. and Maryam, S., 2012. Evaluation of biofloc technology application on water quality and production performance of Red Tilapia Oreochromis sp. cultured at different stocking densities. Hayati Journal of Bioscience. Vol. 19, No. 2, pp: 73-80.
44
Williams, D.R.; Li, W.; Hughes, M.A.; Gonzalez, S.F.; Vernon, C.; Vidal, M.C. and Cossins, A.R., 2008. Genomic resources and microarrays for the common carp Cyprinus carpio L. Journal of Fish Biology. Vol. 72, pp: 2095-2117.
45
Xu, W.J. and Pan, L.Q., 2012. Effects of bioflocs on growth performance, digestive enzyme activity and body composition of juvenile Litopenaeus vannamei in zero-water exchange tanks manipulating C/N ratio in feed. Aquaculture. Vol. 356-357, pp: 147-152.
46
Xu, W.J. and Pan, L.Q., 2014. Evaluation of dietary protein level on selected parameters of immune and antioxidant systems, and growth performance of juvenile Litopenaeus vannamei reared in zero-water exchange biofloc-based culture tanks. Aquaculture. Vol. 426, pp: 181-188.
47
Zhao, P.; Huang, J.; Wang, X.; Song, X.; Yang, C.; Zhang, X. and Wang, G., 2012. The application of bioflocs technology in high-intensive, zero exchange farming systems of Marsupenaeus japonicus. Aquaculture. Vol. 354-355, pp: 97-106.
48
ORIGINAL_ARTICLE
تنظیم نسبت های مختلف کربن به نیتروژن ورودی به سازگان مدار بسته پرورش از طریق غذا و ملاس برای تولید بیوفلاک و بررسی شاخص های رشد ماهی فیتوفاگ و کیفیت آب
در این پژوهش در قالب یک طرح کاملاَ تصادفی، اثر ورود نسبتهای مختلف کربن به نیتروژن 10-15-20 بهمنظور تعیین بهترین نسبت کربن ورودی برای ایجاد شرایط رشد بهتر ماهی فیتوفاگ در سازگان مدار بسته مورد مطالعه قرار گرفت. نتایج این پژوهش نشان داد که شاخصهای رشد ماهی مانند افزایش وزن، ضریب تبدیل غذایی، کارایی پروتیین و ضریب رشد ویژه در کپور نقرهای با افزایش نسبتها ی کربن به نیتروژن 10 و 20 بهبود مییابد. همچنین تنظیم ورود نسبت کربن به نیتروژن، باعث بهبود معنیدار (0/05<P) کیفیت آب و کاهش آمونیاک، نیتریت و نیترات آب در مقایسه با تیمار شاهد شد. لذا، این روش را میتوان بهعنوان یک استراتژی کارآمد در مدیریت استخرهای پرورشی ماهیان گرمابی بهصورت متراکم بهکار برد. با انجام این آزمایش نشان داده شد که استفاده از روشهای بدون تعویض آب مانند فناوری بیوفلاک و تنظیم نسبتهای کربن به نیتروژن میتواند علاوه بر دستیابی به عملکرد بهتر رشد، با کاهش تجمع متابولیتهای تولیدی در سیستم پرورشی و تولید غذا در سیستم، مشکلات زیست محیطی رهایی پساب آبزیپروری را کاهش دهد.
http://www.aejournal.ir/article_81430_02bc8ae9798d38cf87a28e9897500e51.pdf
2018-09-23
199
206
نسبت کربن به نیتروژن
بیوفلاک
کیفیت آب
ماهی فیتوفاک
سیستم مدار بسته
غلامرضا
رفیعی
ghrafiee@ut.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج
LEAD_AUTHOR
APHA. 1998. Standard methods for the examination of the water and wastewater, 22nd ed. American Public Health Association, Washington, DC.
1
Anand, P.; Shyne, S.; Kohli, M.P.S.; Kumar, S.; Sundaray, J.K.; Dam Roy, S.; Venkateshwarlu, G.; Sinha, A. and Pailan, G.H., 2014. Effect of dietary supplementation of biofloc on growth performance and digestive enzyme activities in Penaeus monodon. Aquaculture. pp: 108-419.
2
Avnimelech, Y., 1999. Carbon/nitrogen ratio as a control element in aquaculture systems. Aquaculture. Vol. 176, pp: 227-235.
3
Avnimelech, Y., 2007. Feeding with microbial flocs by tilapia in minimal discharge bioflocs technology ponds. Aquaculture. Vol. 264, pp: 140-147.
4
Avnimelech, Y. and October, A., 2005. Tilapia harvest microbial flocs in active suspension research pond. Global Aquaculture Advocate.
5
Avnimelech, Y., 2012. Biofloc Technology. World Aquaculture Society, Baton Rouge, LA, USA.
6
Avnimelech, Y. and Kochba, M., 2009. Evaluation of nitrogen uptake and excretion by tilapia in bio floc tanks, using 15N tracing, Aquaculture. Vol. 287, pp: 163-168.
7
Avnimelech, Y. and Lacher, M., 1979. A tentative nutrient balance for intensive fish ponds. Bamidgeh. Vol. 31, pp: 3-8.
8
Asaduzzaman, M.; Wahab, M.A.; Verdegem, M.C.J.; Azim, M.E.; Haque, S. and Salam, M.A., 2008. C/N ratio control and substrate addition for periphyton development jointly enhance freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii production in ponds. Aquaculture. Vol. 280, pp: 117-123.
9
Asaduzzaman, M.; Yang, Y.; Wahab, M.A.; Diana, J.S. and Ahmed, Z. F., 2006. Farming system of giant freshwater prawn Macrobrachium rosenbergii in Bangladesh: a combination of tradition and technology. Proceeding of the WAS conference (AQUA 2006) held on 9-13 May, 2006 in Florence, Italy.
10
Azim, M.E. and Little, D.C., 2006. Intensifying aquaculture production through new approaches to manipulating natural food. CAB Reviews: in Agriculture, Veterinary Science, Nutrition and Natural Resources. Vol. 1, No. 062, 23 p.
11
Azim, M.E.; Wahab, M.A.; Biswas, P.K.; Asaeda, T.; Fujino, T. and Verdegem, M.C.J., 2004. The effect of periphyton substrate density on production in freshwater polyculture ponds. Aquaculture. Vol. 232, pp: 441-453.
12
Chu, C. and Lee, D., 2004. Multiscale structures of biological flocs. Chemical Engineering Science. Vol. 59,
13
pp: 1875-1883.
14
De Schryver, P.; Crab, R.; Defoirdt, T.; Boon, N. and Verstraete, W., 2008. The basics of bioflocs technology: the added value for aquaculture. Aquaculture. Vol. 277, pp: 125-137.
15
Hari, B., Madhusoodana, K., Varghese, J.T., Schrama, J.W. and Verdegem, M.C.J., 2004. Effects of carbohydrate addition on production in extensive shrimp culture.
16
Hargreaves, J.A., 2006. Photosynthetic suspended-growth system in aquaculture. Aquacult. Eng. Vol. 34, pp: 344-363.
17
Naylor, R.L.; Goldburg, R.J.; Primavera, J.H.; Kautsky, N., Beveridge, M.C.M.; Clay, J.; Folke, C.; Lubchenco, J.; Mooney, H. and Troell, M., 2000. Effect of aquaculture on world fish supplies. Nature. Vol. 405, pp: 1017-1024.
18
Rafiee, Gh. and Saad, C.R., 2005. Nutrient cycle and sludge production during different stages of red tilapia (Oreochromis sp.) growth in a recirculating aquaculture system, Aquaculture. Vol. 244, pp: 109-118.
19
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی میزان ایمنی واکسن بایوفیلم آئروموناس هیدروفیلا خوراکی و تزریقی در ماهی انگشت قد کپورمعمولی (Cyprinus carpio)
علی رغم مزیت های فراوان واکسن های خوراکی، به دلیل تخریب آنتی ژنی در دستگاه گوارش ماهی، این واکسن ها کارایی پایینی داشته و کاربرد چندانی در آبزی پروری نیافته اند. کیتین یک پلیمر طبیعی است که باکتری آئروموناس می تواند فیلم زیستی (Biofilm) از آن ایجاد نماید که باعث مقاومت باکتری در برابر اسید معده و سیستم آنزیمی روده می گردد. ابتدا واکسن بیوفیلم آئروموناس هیدروفیلا تولید گردید و سپس کارایی واکسن تجویز خوراکی و تزریقی آن در ماهی کپورمعمولی ارزیابی گردید. به این منظور، 700 عدد ماهی کپور 14±46 گرمی، به 9 تیمار مساوی در سه تکرار به صورتی تقسیم گردید که تیمار اول تا چهارم به ترتیب با واکسن بایوفیلم، باکترین، کیتین+ محیط کشت و کیتین، به روش خوراکی ایمن شدند، تیمار پنجم تا هشتم به همین صورت به روش تزریقی ایمن شدند، تیمار نهم بدون تجویز واکسن به عنوان شاهد در نظر گرفته شد. ماهیان هر تیمار در روز 60 با غلظت مک فارلند 8 (CFU/mL109×2/4) LD50 باکتری آئروموناس هیدروفیلا تزریق گردیدند. میزان تلفات در مدت 10روز ثبت گردید و درصد بقای نسبی (RPS) هر تیمار مشخص گردید. نتایج حاصل نشان داد که بالاترین میزان RPS به ترتیب مربوط به بایوفیلم تزریقی، بایوفیلم خوراکی و باکترین تزریقی بود که به طور معنی داری بالاتر از سایر تیمارها بودند (0/05>P). در واکسن تزیقی RPS تحت تاثیر بایوفیلم قرار نگرفت و هر دو تیمار باکترین و بایوفیلم معنی دار بودند (0/089=P)، هر چند در واکسن خوراکی RPS به طور معنی داری تحت تاثیر بایوفیلم قرارگرفت و تیماربایوفیلم نسبت به بقیه تیمارها بازماندگی بیش تری داشت (0/05>P).
http://www.aejournal.ir/article_81439_21a9c363e7f9e28535b6c47431a3193a.pdf
2018-09-23
207
212
واکسن بایوفیلم
ماهی کپورمعمولی Cyprinus carpio
آئروموناس هیدروفیلا
ایمنی زایی
امیر
آرامون
aramoon.haser@gmail.com
1
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران، صندوق پستی: 135
LEAD_AUTHOR
مجتبی
علیشاهی
alishahimoj@gmail.com
2
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران، صندوق پستی: 135
AUTHOR
مسعود رضا
صیفی آباد شاپوری
masoudrs@scu.ac.ir
3
گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
مسعود
قربانپور
m.ghorbanpoor@scu.ac.ir
4
گروه پاتوبیولوژی، دانشکده دامپزشکی دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
AUTHOR
آهنگرزاده م.؛ قربانپور، م.؛ پیغان، ر.؛ شریف روحانی، م. و سلطانی، م.، 1394. نقش آئروموناس هیدروفیلا در سپتی سمی های باکتریایی کپورماهیان پرورشی استان خوزستان. دوره 11، شماره3، صفحات 5 تا 16.
1
علیشاهی، م.؛ سلطانی، م. و زرگر، ا.، 1388. بررسی باکتریایی تلفات ماهی آمور (Ctenopharyngodon idella) در استان خوزستان. مجله دامپزشکی ایران. دوره 4، شماره 5، صفحات 25 تا 34.
2
Abhiman, M.F.S.,2014.Effect of Aeromonas hydrophila biofilm oral vaccine on gut immunity of carps.Phd Thesis Karnataka Veterinary, Animal and Fisheries Sciences University, Bidar. 86 P.
3
Alishahi, M.; Esmaeili Rad, A.; Zarei, M. and Ghorbanpour, M., 2014. Effect of dietary chitosan on immune response and disease resistance in Cyprinus carpio. Iranian Journal of Veterinary Medicine. Vol. 8, No. 2, pp: 125-133.
4
Alishahi, M.; Ranjbar, M.M.; Ghorbanpour, M.; Peyghan, R.; Mesbah, M. and Razi jalali, M., 2010. Effects of dietary Aloe vera on some specific and nonspecific immunity in the common carp (Cyprinus carpio). International Journal of Veterinary Research. Vol. 4, No. 3, pp: 189-195.
5
Azad, I.S.; Shankar, K.M.; Mohan, C.V. and Kalita, B., 2000. Uptake and processing of biofilm and free-cell vaccines of Aeromonas hydrophila in Indian major carps and common carp following oral vaccination antigen localization by a monoclonal antibody. Disease of Aquatic Organisms. Vol. 43, pp: 103-108.
6
Azad, I.S.; Shankar, K.M. and Mohan, C.V., 1997. Evaluation of an Aeromonas hydrophila biofilm for oral vaccination of carps. In: Flegel TW, McRae IH (eds) Diseases in Asian aquaculture III. Fish health section, Asian Fisheries Society, Manila. pp: 519-528.
7
Cuesta, A.M.; Esteban, A. and Meseguer, J., 2003. In vitro effect of chitin particles on the innate cellular immune system of gilthead seabream (Sparus aurata L.). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 1, pp: 1-11.
8
Esteban, M.A.; Cuesta, A.; Ortuno, J. and Meseguer, J., 2001. Immunomodulatory effects of dietary intake of chitin on gilthead seabream (Sparus aurata L.) innate immune response. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 11, pp: 303-315.
9
Kawakami, H.; Shinohara, N. and Sakai, M., 1998. The non-specific immunostimulation and adjuvant effects of Vibrio anguillarum bacterin, M-glucan, chitin and Freund’s complete adjuvant against Pasteurella piscicida infection in yellowtail. Fish Pathology. Vol. 33, pp: 287-292.
10
Kuz'mina, V.V.; Golovanova, I.L. and Izvekova, G.I., 1996. Influence of temperature and season on some characteristics of intestinal mucosa carbohydrates in six freshwater fishes. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 113, pp: 255-260.
11
Lamers, C.H.J.; De Haas, M.J.M. and Van Muiswinkel, W.B. 1985. Humoral response and memory formation in carp Cyprinus carpio after injection of Aeromonas hydrophila bacterin. Developmental and Comparative Immunology. Vol. 9, pp:65-76.
12
Lio-po, G.D.; Albright, L.J.; Michel, C. and Leano, E.M., 1998. Experimental induction of lesions in snakeheads (Ophicephalus striatus) and catfish (Clarias batrachus) with Aeromonas hydrophila, Aquaspirillum sp., Pseudomonas sp. and Streptococcus Sp.J Appl Ichthyol. Vol. 14, pp: 75-59.
13
Muzzarelli, R.A.A., 1999. Chitin and chitinases. Switzerland: Birkha¨user Verlag Basel. pp: 279-292.
14
Nayak, D.K.; Asha, A.; Shankar, K.M. and Mohan, C.V., 2004. Evaluation of biofilm of Aeromonas hydrophila for oral vaccination of Clarias batrachusda carnivore model. Fish & Shellfish Immunology. Vol. 16, pp: 613-619.
15
Nishimura, K.; Ishihara, C.; Ukei, S.; Tokura, S. and Azuma, I., 1986. Stimulation of cytokine production in mice using deacetylated chitin. Vaccine. Vol. 4, pp: 151-156.
16
Prabhugouda, S.K.M.; Shankar, B.T.; Naveen, K.; Rajreddy, P. and Omkar, V.B., 2014. Evaluation of biofilm of Aeromonas hydrophila for oral vaccination of Channa striatus.Fish and Shellfish Immunology. Vol. 41, pp: 581-585.
17
Schjørring, S. and Krogfelt, K.A., 2011. Assessment of bacterial antibiotic resistance transfer in the gut. Inter J Microbiol. pp: 1-10.
18
Tokura, S.; Tamura, H. and Azuma, I., 1999. Immunological aspects of chitin and chitin derivatives administered to animals. In: Jolles. Vol. 87, pp: 279-292.
19
Zambonino, I.J.L. and Cahu, C.L., 2001. Ontogeny of the gastrointestinal tract of marine fish larvae. Comp Biochem Physiol. Vol. 130, pp: 477-487.
20
ORIGINAL_ARTICLE
تعیین غلظت کادمیوم در بافتهای ماهی سفید (Rutilus kutum) و ارزیابی خطر مصرف آن در سواحل جنوبی دریای خزر
محصولات دریایی ﺑﻪ رﻏﻢ تأمین بخشی مهمی از پروتئین مورد نیاز انسانها، موجب بهوجود آوردن خطراتی برای سلامت آنها میشوند. از این رو هدف از این مطالعه تعیین تجمع کادمیوم در بافتهای پوست و عضله جنسهای نر و ماده ماهی سفید و در نهایت مطالعه ارزیابی خطر مصرف آن میباشد.پس از انجام هضم اسیدی تعداد 30 عدد ماهی سفید نمونهبرداری شده از سواحل جنوبی دریای خزر، میزان کادمیوم در آنها با استفاده از دستگاه جذب اتمی اندازهگیری شد. میانگین غلظت کادمیوم در بافت پوست و عضله به ترتیب 0/09± 0/45 و 0/06 ± 0/38 میکروگرم بر گرم وزن تر به دست آمد. نتایج آنالیزهای آماری تفاوت معنیداری را بین بافت پوست و عضله نشان داد (0/01>p). هم چنین اختلاف معنیداری در غلظت کادمیوم بین جنس نر و ماده مشاهده نشد. میزان سیبل خطر هدف (0/0002) پایینتر از میزان مجاز ارائه شده بود. میزان جذب روزانه و هفتگی بهترتیب 1/42 و 9/97 میکروگرم در روز/هفته به دست آمد که پایینتر از حداکثر میزان قابل قبول توسط کمیته مشترک سازمانهای بهداشت جهانی و فائو بود. حد مجاز مصرف ماهی سفید از نظر کادمیوم برای افراد بالغ 0/16 و برای کودکان 0/03 کیلوگرم در روز بهدست آمد. هم چنین تعداد وعدههای مجاز مصرف برای افراد بالغ 21/79 و برای کودکان 4/51 وعده در ماه به دست آمد. نتایج مطالعه حاضر نشان داد که میزان کادمیوم در ماهی سفید پایینتر از میزانی میباشد که در بلند مدت خطرات بهداشتی را متوجه مصرف کنندگان آن، با میزان کنونی مصرف داشته باشد.
http://www.aejournal.ir/article_81573_7845eae099d58c0d6460cf7e627ce5d1.pdf
2018-09-23
213
220
کادمیوم
ماهی سفید
فلز سنگین
ریسک غذایی
محمد
شریفی
mohammad_sharifi777@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده محیط زیست و انرژی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات، تهران، صندوق پستی: 775-14515
AUTHOR
تورج
ولی نسب
t_valinassab@yahoo.com
2
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، صندوق پستی: 6116-14155
LEAD_AUTHOR
لعبت
تقوی
l.taghavi@srbiau.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده محیط زیست و انرژی، دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات، تهران، صندوق پستی: 775-14515
AUTHOR
اداره آمار صید سازمان شیلات ایران. 1396. آمارنامه سازمان شیلات ایران.
1
اسماعیلیساری، ع.، 1381. آلایندهها، بهداشت و استاندارد در محیط زیست. انتشارات نقش مهر تهران. 798 صفحه.
2
امینیرنجبر، غ. و علیزاده، م.، 1378. اندازهگیری مقادیر فلزات سنگین (Cd، Pb، Cu، Zn،Cr) در سه گونه از کپور ماهیان پرورشی. پژوهش و سازندگی. شماره 40، صفحات 146 تا 149.
3
بانک اطلاعاتی ماهیان ایران. 1392. قابل دسترس در http://drkasraie.blogfa.com.
4
ﺗﻘﻮی، ا.، 1377. روشهای ﻣﻨﺎﺳﺐ ﺣﻔﺎﻇﺖ از ﻣﻨﺎﺑﻊ آﺑﺰﯾﺎن. ﻣﺠﻤﻮﻋﻪ ﻣﻘﺎﻻت ﻣﺎﻫﯿﮕﯿﺮی ﻣﺴﺌﻮﻻﻧﻪ. ﺷﺮﮐﺖ ﺳﻬﺎﻣﯽ ﺷﯿﻼت اﯾﺮان. ﺻﻔﺤﺎت صفحات 41 تا 55..
5
حسنپور، م.؛ رجایی، ق.؛ سینکاکریمی، م.ح.؛ قدوسیان، ف. و مقصودلوراد، ر.، 1393. تعیین غلظت و ارزیابی خطر غذایی فلزات سرب، کادمیوم، مس و روی ناشی از مصرف ماهی سفید (Rutilus frisii kutum) در تالاب بینالمللی میانکاله. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. سال 24، شماره 113، صفحات 176 تا 183.
6
دریانبرد، غ.؛ عبدالملکی، ش.؛ کر، د. و قدیرنژاد، س.ح.، 1388. ارزﯾﺎﺑﯽ ذﺧﺎﯾﺮ ﻣﺎﻫﯿﺎن اﺳﺘﺨﻮاﻧﯽ در ﺳﻮاﺣﻞ اﯾﺮاﻧﯽ دریای ﺧﺰر (1384-86). ﻣﻮﺳﺴﻪ ﺗﺤﻘﯿﻘﺎت ﺷﯿﻼت اﯾﺮان. 158 ﺻﻔﺤﻪ.
7
سینکاکریمی، م.ح.؛ دنیوی، ر. وصادقیباجگیران، س.، 1394. تعیین حد مجاز مصرف ماهی سفید (Rutilus kutum) از نظر فلزات سرب و کادمیوم در سواحل جنوبی دریای مازندران. مجله علوم پزشکی زانکو. سال 16، شماره 49، صفحات 32 تا 43.
8
سینکاکریمی، م.ح.؛ حسنپور، م. و احمدپور، م.، 1393. میزان سلنیوم و وانادیوم در ماهیهای کیلکای معمولی و آلوزا در سواحل جنوبی دریای مازندران و ارزیابی خطر مصرف غذایی ناشی از آن. مجله علوم پزشکی زانکو. سال 15، شماره 47، صفحات 1 تا 9.
9
سینکاکریمی، م.ح.؛ منصوری، ب.؛ دنیوی، ر. و آزادی، ن.ا.، 1396. ﺗﻌﻴﻴﻦ ﺧﻄﺮات و ﺣﺪ ﻣﺠﺎز ﻣﺼﺮف ﻣﺎﻫﻲﻫﺎی ﺳﻔﻴﺪ، ﻛﻔﺎل و ﻛﭙﻮر از ﻧﻈﺮ ﻓﻠﺰ ﺳﺮب در ﺳﻮاﺣﻞ ﺟﻨﻮﺑﻲ درﻳﺎی ﺧﺰر ﻣﻄﺎﻟﻌﻪ: ﻣﺮوری ﺳﻴﺴﺘﻤﺎﺗﻴﻚ و ﻣﺘﺎآﻧﺎﻟﻴز. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. سال 27، شماره 147، صفحات 415 تا 432.
10
صادقیراد، م.؛ امینیرنجبر، غ.؛ ارشد، ع. و جوشیده، ه.، 1384. مقایسه تجمع فلزات سنگین (روی، مس، کادمیوم، سرب و جیوه) در بافت عضله و خاویار دو گونه تاسماهی ایرانی (persicus Acipenser) و ازونبرون (stellatus Acipenser) حوضه جنوبی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. سال 14، شماره 3، صفحات 79 تا 99.
11
ﻋﺒﺪاﻟﻤﻠﮑﯽ، ش. و غنینژاد، د.، 1386. ارزﯾﺎﺑﯽ ذﺧﺎﯾﺮ ﻣﺎﻫﯽ ﺳﻔﯿﺪ در ﺳﻮاﺣﻞ اﯾﺮاﻧﯽ درﯾﺎی ﺧﺰر در ﺳﺎل 83-1382. ﻣﺠﻠﻪ ﻋﻠﻤﯽ ﺷﯿﻼت اﯾﺮان. شماره 1، ﺻﻔﺤﺎت 103 تا 114.
12
عبدلی، ا.، 1378. ماهیان آبهای داخلی ایران. انتشارات نقش مانا. 377 صفحه.
13
کریم، گ.؛ کیایی، س. م.م.؛ رکتی، ن.؛ رضویروحانی، س.م. و مطلبی، ع.، 1391. وضعیت آلودگی مواد غذایی با منشأ دامی و آبزیان به فلزات سنگین در کشور. مجله علوم و صنایع غذایی. سال 9، شماره 34، صفحات 25 تا 35
14
کریمیایرج، ز.؛ پورخباز، ع.ر.؛ حسنپور، م. و سینکاکریمی، م.ح.، 1393. تعیین میزان کروم، نیکل، مس و روی در بافتهای کیلکای معمولی و آلوزا و ارزیابی خطر غذایی مصرف آن در سواحل جنوبی دریای مازندران. مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. سال 24، شماره 118، صفحات 99 تا 111.
15
لاهیجانزاده، ا.، 1383. اندازهگیری و تعیین میزان فلزات سنگین جیوه، کادمیوم و سرب در آب، رسوب و ماهیان رودخانههای کارون. پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشگاه آزاد واحد علوم و تحقیقات خوزستان.
16
نصرا...زادهساروی، ح.؛ پورغلام، ر.؛ پورنگ، ن.؛ رضایی، م.؛ مخلوق، آ. و یونسیپور، ح.، 1392. ﻣﻄﺎﻟﻌﻪ ﺗﺠﻤﻊ ﺑﺮخی از ﻓﻠﺰات ﺳﻨﮕﻴﻦ در ﺑﺎﻓﺖ ﺧﻮراﻛﻲ ﻣﺎﻫﻲ کپور (Cyprinus Carpio) و ﺑﺮآورد ﻣﻴﺰان ﺳﻴﺒﻞ ﺧﻄﺮ در ﺣﻮزه اﻳﺮاﻧﻲ درﻳﺎی ﺧﺰر (سال 1389). مجله دانشگاه علوم پزشکی مازندران. سال 23، شماره 103، صفحات 33 تا 44.
17
وثوقی، غ. و مستجیر، ب.، 1388. ماهیان آب شیرین. انتشارات دانشگاه تهران. 334 صفحه.
18
Abdelrahim, A.A.; Elhadi, M.E. and Mohamed, A.A., 2011. Determination of heavy metals in four common fish, water and sediment collected from Red Sea at Jeddah Isalmic Port Coast. Journal of Applied Environmental and Biological Sciences. Vol. 1, pp: 453-459.
19
Anderson, D.M. and Morel, F.M., 1978. Copper sensitivity of Gonyaulax tamarensis. Limnol Oceanogr. Vol. 23,
20
pp: 283-295.
21
Arian, M.B.; Kazi, T.G.; Jamali, M.K.; Jalbani, N.; Afrida, H.I. and Shah, A., 2008. Total dissolved and bioavailable elements in water and sediment samples and their accumulation in Oreochromis mossambicus of polluted Manchar Lake. Chemosphere. Vol. 70, pp: 1845-1856.
22
Beheshti, M.; Askari-Sari, A. and Velayatzadeh, M., 2011. Assessment of heavy metals concentration of fish (Liza abu) in Karoon River, Khouzestan province. Journal of Water and Sewage. Vol. 3, pp: 125-133.
23
Cooper, C.B.; Doyle, M.E. and Kipp, K., 1991. Risk of consumption of contaminated seafood, the Quincy Bay Case Study. Environmental Health Perspectives. Vol. 90, pp: 133-140.
24
Demirak, A.; Yilmaz, F.; Tuna, A.L. and Ozdemir, N., 2006. Heavy metals in water, sediment and tissues of Leuciscus cephalus from a stream in south western Turkey. Chemosphere. Vol. 63, pp: 1451-1458.
25
Dobaradaran, S.; Naddafi, K.; Nazmara, S. and Ghaedi, H., 2010. Heavy metals (Cd, Cu, Ni and Pb) content in two fish species of Persian Gulf in Bushehr Port, Iran. African Journal of Biotecnology. Vol 9, pp: 6191-6193.
26
FAO (Food and Agriculture Organizations of United Nations). 2009. The state of world fisheries and aquaculture. Rome, Italy.
27
Farkas, A.; Salanki, J. and Speccziar, A., 2003. Age and size- specific patterns of heavy metals in the organs of freshwaters fish Abramis brama L. Population a low contaminated site. Water Research. Vol. 37, pp: 959-964.
28
Freedman, J.H. and Peisach, J., 1989. Resistance of cultured hepatoma cells to copper toxicity. Purification and characterization of the hepatoma metallothionein. Biochimica et Biophysica Acta (BBA) General Subjects. Vol. 992, pp: 145-154.
29
Gaspic, Z.K.; Zvonaric, T.; Vrgoc, N. and Baaric, A., 2002. Cadmium and Lead in selected tissues of two commercially important fish species from the Adriatic Sea. Water Research. Vol. 36, pp: 5023-5028.
30
Hardersen, S. and Wratten, S.D., 1998. The effects of carbaryl exposure of the penultimate larval instars of Xathocnemis zealandica on emergence and fluctuating asymmetry. Ecotoxicology. Vol. 7, PP: 297-304.
31
IRIS (Integrated Risk Information System) online database. 2013. Environmental Protection Agency. USA.
32
JECFA. 2013. Joint FAO/WHO Expert Committee on Food Additives.
33
Kazakhstan Academy of Sciences. 1994. Biodiversity of Caspian Sea’s Living Resources. p: 158.
34
Ministry of Health and Medical Education of Iran (MHMEI). 2015. Average lifetime of Iranian; available from: http://www.behdasht.gov.ir
35
Mol, S.; Karakulak, F.S. and Ulusoy, S., 2017. Potential health risks due to heavy metal uptake via consumption of Thunnus thynnus from the northern Levantine Sea. Toxin Reviews. pp: 1-6.
36
Naghipour, D.; Shaabaninejad, Z. and Amouei, A., 2016. Evaluation of heavy metal concentrations in Rutilus frisii kutum on the southern coast of the Caspian Sea (northern Iran). Environmental Health Engineering and Management Journal. Vol. 3, pp: 55-59.
37
Oguzie, F.A. and Izerbigie, A.A., 2009. Heavy Metals concentration in the organs of the silver Catfish, Chrysichthys nigrodigitatus (Lacèpéde) caught upstream of the Ikpoba River and the reservoir in Benin City. Bioscience Research Communications. Vol. 21, pp: 189-197.
38
Ruelas-Inzunza, J.; Meza-Lópeza, G. and Páez-Osuna, F., 2008. Mercury in fish that are of dietary importance from the coasts of Sinaloa (SE Gulf of California). Journal of Food Composition and Analysis. Vol. 21, pp: 211-218.
39
Saeed, S.M. and Shaker, I.M., 2008. Assessment of heavy metals pollution in water and sediments and their effect on Oreochromis niloticus in the Northern Delta Lakes, Egypt. In 8th International Symposium on Tilapia in Aquaculture. pp: 475-490.
40
Turkmen, A.; Turkmen, M.; Tep, Y. and Akyurt, I., 2005. Heavy metals in three Commercially Valuable fish species from Iskenderun Bay, North East Mediterranean Sea, Turkey. Food Chemistry. Vol. 91, pp: 167-172.
41
U.S. Guidance for assessing chemical contaminant data for use advisories. 2000. Risk assessment and fish consumption limites. 3th ed. Washington, D.C: U.S. Enviromental Protection Agency. Vol. 2, Available from: http://www.epa.gov/waterscience/fish/guidance.html.
42
USEPA. 1989. Guidance manual for assessing human health risks from chemically contaminated, fish and shellfish. United State Environmental Protection Agency. EPA-503/8-89-002, US EPA Office of Marine and Estuarine Protection. Washington DC.
43
USEPA. 2000. Risk-based Concentration Table. United States Environmental Protection Agency. Philadelphia: PA. Washington DC.
44
Wang, S.L.; Xu, X.R.; Sun, Y.X.; Liu, J.L. and Li, H.B., 2013. Heavy metal pollution in coastal areas of South China: a review. Marine Pollution Bulletin. Vol. 76, pp: 7-15.
45
Yi, Y.; Yang, Z. and Zhang, S., 2011. Ecological risk assessment of heavy metals in sediment and human health risk assessment of heavy metals in fishes in the middle and lower reaches of the Yangtze River basin. Environmental Pollution. Vol. 159, pp: 2575-2585.
46
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات جایگزینی کنجاله کنجد با پودر ماهی روی شاخصهای رشد، کیفیت لاشه و پارامترهای خونی در ماهی سفید دریای خزر (Rutilus frisii kutum)
هدف از این مطالعه تعیین اثر جایگزینی پروتئین های گیاهی کنجاله کنجد با آرد ماهی بر عملکرد رشد، برخی ترکیبات لاشه و پارامترهای خونی در ماهی سفید دریای خزر بود. جهت انجام آزمایش تعداد 600 قطعه بچه ماهیان 1 تا 3 گرمی در 15 حوضچه ونیرو با تراکم 40 عدد در هر حوضچه ونیرو رهاسازی شد. غذادهی با جیره های حاوی سطوح مختلف کنجاله کنجد به صورت 4 تیمار شامل (10، 20، 30، 40) درصد کنجاله کنجد جایگزین پودر ماهی و یک تیمار به عنوان شاهد (فاقد کنجاله کنجد) درنظر گرفته شد. نتایج ارزیابی فاکتورهای رشد و لاشه نشان داد که بیش ترین میزان افزایش وزن (0/02±0/62) و نرخ رشد ویژه (0/02±0/54) و کم ترین میزان ضریب تبدیل غذایی (0/03±2/63) در تیمار شاهد مشاهده شد که با سایر تیمارهای آزمایش اختلاف معنی دار داشت (0/05>p). هم چنین بیش ترین میزان رطوبت (0/10±72/20)، پروتئین (0/04±14/89) و کم ترین میزان چربی (0/05±9/17) تیمار شاهد مشاهده شد که با سایر تیمارهای آزمایش اختلاف معنی دار داشت (0/05>p). نتایج حاصل از فاکتورهای خونی نشان داد که بیش ترین میزان گلبول قرمز (0/04±1/64)، گلبول سفید (0/04±15/91)، هموگلوبین (0/08±6/63)، هماتوکریت (1/00±42/00) و MCHC (15/78±0/31) در تیمار شاهد مشاهده شد و هم چنین بیش ترین میزان پروتئین کل (0/12±4/66)، آلبومین (0/1±1/76)، گلوبولین (0/1±2/9)، تری گلیسرید (6/78±335/8) و کلسترول (3/3±269/65) نیز در تیمار شاهد مشاهده شد که داری اختلاف معنیداری با سایر تیمارهای آزمایشی بود (0/05>p). این مطالعه نشان داد که گنجاندن سطوح مختلف کنجاله کنجد به جای پودر ماهی در جیره غذایی ماهی سفید دریای خزر اثر منفی بر روی پارامترهای رشد داشت اما هیچ تاثیر منفی بر روی فاکتورهای خونی نداشت.
http://www.aejournal.ir/article_81595_a441fe009055e7981474ba22f1f958e1.pdf
2018-09-23
221
228
ماهی سفید دریای خزر
کنجاله کنجد
پودر ماهی
رشد
فاکتورهای خونی
سحر
سیاحان
sahar.sayahan94@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 487-49175
AUTHOR
محمدرضا
ایمانپور
mrimanpoor@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 487-49175
LEAD_AUTHOR
حسین
پناهی صاحبی
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 487-49175
AUTHOR
ابراهیم نژاد، ی. و یوزباشی، م.، 1389. اثرات سطوح مختلف کنجاله کنجد بر عملکرد جوجه های گوشتی. پنجمین همایش ملی ایده های نو در کشاورزی، خوراسگان، دانشگاه آزاد اسلامی واحد خوراسگان. صفحه 54.
1
حسینی فرد، س.م.؛ قبادی، ش.؛ خدابخش، ا. و رزاقی منصور، م.، 1392. تاثیر جیره های حاوی سطوح مختلف آرد سویا همراه با مکمل آنزیمی آویزایم بر شاخص های هماتولوژی و بیوشیمیایی سرم خون ماهی قزل آلای رنگین کمان. مجله دامپزشکی ایران. دوره 9، شماره 3، صفحات 43 تا 53.
2
دانش خوش اصل، ع.، 1372. گزارش نهایی پروژه پرورش ماهی سفید به روش تک گونه ای و پرورش توام با کپورماهیان چینی. مرکز تحقیقات شیلات استان گیلان. صفحات 5 تا 12.
3
رضوی، ب.، 1371. بیولوژی ماهی سفید. سازمان تحقیقات شیلات ایران. صفحات 4 تا 22.
4
سوداگر, م. و عقیلی، ک.، ۱۳۸۶. استفاده از موادجاذب در جیره غذایی ماهیان خاویاری (Acipenseridae) به منظور تحریک غذاگیری و افزایش خوش خوراکی. دومین همایش ملی کشاورزی بوم شناختی ایران,گرگان,دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. صفحه 42.
5
شاهسونی،د.؛ وثوقی،غ. و خضرائی نیا،پ.، 1379. تعیین برخی شاخص های خونی ماهیان خاویاری و انگشت قد قره برون و اوزون برون در استان گیلان. مجله پژوهش و سازندگی. شماره 50، صفحات 16 تا 18.
6
علیزاده، م.، 1388. تغذیه و غذادهی ماهی و سخت پوستان. تالیف: گالیوم، ج.، کاشیک، س.، برگات، پ.، متیلر، ر.، موسسه تحقیقات شیلات ایران. چاپ اول. 506 صفحه.
7
محسنی، م.؛ پورکاظمی، م.؛ بهمنی، م.؛ پورعلی، ح.؛ کاظمی، ر. و علیزاده، م.، 1385. گزارش نهایی پروژه تعیین احتیاجات غذایی فیل ماهی از مرحله لاروی تا مرحله عرضه به بازار. انستیتو تحقیقات بین المللی ماهیان خاویاری. موسسه تحقیقات و آموزش شیلات ایران. 224 صفحه.
8
هدایتی، س.ع.ا.؛ باقری، ط.؛ یاوری، و.؛ بهمنی، م. علیزاده، م.، 1387. بررسی برخی از فاکتورهای بیوشیمیایی سرم خون فیل ماهیان پرورشی (Huso huso) در آب لب شور. مجله زیست شناسی ایران. جلد 21، شماره 4، صفحات 658 تا 666.
9
Alegbeleye, W.O.; Obasa, S.O.; Olude, O.O.; Moronkeji, T. and Abdulraheem, I., 2012. Growth performance and nutrient utilization of African mud catfish fingerlings fed different levels of fermented pigeon pea meal. Israeli J Aquac Bamidgeh. Vol. 64, No. 731, pp: 57-64.
10
AOAC. 1990. Official Methods of Analyses, In: Helrich, K. (Ed.), 15th edition. Association of Official Analytical Chemists Inc, Arlington, VA.
11
Azaza, M.S.; Mensi, F.; Imorou took, I.; Dhraief, M.N.; Abdelmouleh, A.; Brini, B. and Krauem, M.M., 2006. Effets del incorporation de la farine de tomate dans lalimentation du tilapia du Nil ene levage dans les eaux ge othermales du sud tunisien. Bulletin de l’Institut National Scienti¢que et Technique Mer. Vol. 33, pp: 41-52.
12
Azaza, M.S.; Mensi, F.; Ksouri, J.; Dhraief, M.N.; Brini, B.; Abdelmouleh, A. and Kracem, M.M., 2008. Growth of Nile tilapia fed with diets containing graded levels of green algae ulva meal reared in geothermal waters of southernTunisia. J of Applied Ichthyol. Vol. 24, pp: 202-207.
13
Canli, M., 1996. Effects of mercury, chromiumand nickel on glycogen reserves and protein levelsin tissues of Cyprinus carpio. Journal of Zool. Vol. 20, pp: 161-168.
14
Cnaani, A.; Tinman, S.; Avidar, Y.; Ron, M. and Hulata, G., 2004. Comparative study of biochemical parameters in response to stress in Oreochomis aureus, O. mossambicus and two strains of O. niloticus. Aquacult. Res. Vol. 35, pp: 1434-1440.
15
Dongmeza, E.; Siddhuraju, P.; Francis, G. and Becker, K., 2006. Effects of dehydrated methanol extracts of moringa (Moringa oleifera Lam.) leaves and three of its fractions on growth performance and feed nutrient assimilation in Nile tilapia. Aquaculture. Vol. 261, pp: 133-148.
16
Farhangi, M. and Carter, C.G., 2001. Growth, physiological and immunological responses of rainbow trout to different dietary inclusion levels of dehulled lupin (Lupinus angustifolius). Aquac. Res. Vol. 32, pp: 329-340.
17
Francis, G.; Makkar, H.P.S. and Becker, K., 2001. Antinutritional factors present in plant derived alternate fish feed ingredients and their effects in fish. Aquaculture. Vol. 119, pp: 197-227.
18
Gatlin, D.M.; Barrows, F.T.; Braown, P.; Dabrowski, K.; Gaylord, T.G.; Hardy, R.W.; Herman, E.; Hu, G.; Krogdahl, A.; Nelson, R.; Overturf, K.; Rust, M.; Sealy. W.; Skonberg, D.; Souza, E.J.; Stone, D.; Wilson, R. and Wurtele, E., 2007.,Expanding the utilization of sustainable plant products in aqua feeds: a review. Aquaculture Research. Vol. 38, pp: 551-579.
19
Ghosh, P.; Ghosal, P.; Thakur, S.; Lerouge, P.; Loutelier Bourhis, C. and Driouich, A., 2005. Polysaccharides from Sesamum indicum meal: isolation and structural features. Food Chem. Vol. 90, pp: 719-726.
20
Guo, Y.X.; Dong, X.H.; Tan, B.P.; Chi, Sh.Y.; Yang, Q.H.; Chen, G. and Zhang, L., 2011. Partial replacement of soybean meal by sesame meal in diets of juvenile Nile tilapia. Aquaculture Research. Vol. 42, pp: 1298-1307.
21
Halver, J.E., 1989. Fish Nutrition. 2nd edition; Academic press, London. 798 p.
22
Hawk, P.B.; Oser, B.L. and Summersion, W.H., 1954. Practical physiological chemistry. McGraw-Hill. NewYork.
23
Hoseinifar, S.H.; Mirvaghefi, A.; Merrifield, D.L.; Mojazi Amiri, B.; Yelghi, S. and Darvish Bastami, K., 2011. The study of some haematological and seru biochemical parameters of juvenile beluga (Huso huso) fed oligofructose. Fish Physiol. Biochem. Vol. 37, pp: 91-96.
24
Hosseini, S.A. and Khajepour, F., 2013. Effect of partial replacement of dietary fish meal with soybean meal on some hematological and serum biochemical parameters of juvenile beluga, Huso huso. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 12, No. 2, pp: 348-356.
25
Imanpoor, M.R.; Bagheri, T. and Azimi, A., 2010. Serum Biochemical Change Induced by Soybean Meal in Diet on Persian Sturgeon. Global Veterinaria. Vol. 5, No. 1, pp: 61-64.
26
Jahanbakhshi, A.; Imanpoor, M.R.; Taghizadeh, V. and Shabani, A., 2012. Hematological and serum biochemical indices changes induced by replacing fishmeal with plant protein in the Great sturgeon(Huso huso). Comp. Clin. Pathol. DOI 10.1007/s 00580-012-1532-4.
27
Kaushik, S.J.; Cravedi, J.P.; Lalle`s, J.P.; Sumpter, J.; Fauconneau, B. and Laroche, M., 1995. Partial or total replacement of fish meal by soya protein on growth, protein utilization, potential estrogenic or antigenic effects, cholesterolemia and flesh quality in rainbow trout. Aquaculture. Vol. 274, pp: 133-257.
28
Luo, L.; Xue, M.; Wu, X.; Cai, X.; Cao, H. and Liang, Y., 2006. Partial or total replacement of ¢sh meal by solvent extracted cottonseed meal in diets for juvenile rainbow trout. Aquaculture Nutrition. Vol. 12, pp: 418-424.
29
Mahmoodi, M.; Khodadadi, M.; Javaheri Baboli, M. and Shafaei poor, A., 2009. Determination the effects of replacing canola meal with soybeen mealon the growth of rainbow trout.Journal of fisheries. Vol. 3, No. 3, pp: 21-30.
30
Mehrabi, Z.; Firouzbakhsh, F. and Jafarpour, A., 2012. Effects of dietary supplementation ofsynbiotic on growth performance, serumbiochemical parameters and carcass composition inrainbow trout fingerlings. Animal physiology and AnimalNutrition. Vol. 96, pp: 474-481.
31
Moradi, N.; Imanpoor, M.R. and Taghizadeh, V., 2013. Hematological and Biochemical Changes Induced by Replacing Fish Meal with Plant Protein in the Cyprinus carpio. Global Veterinaria. Vol. 11, No. 2, pp: 233-237.
32
Mukhopadhyay, N. and Ray, A.K., 1999. Improvement of quality of sesame, Sesamum indicum seed meal protein with supplemental amino acids in feeds for rohu, Labeo rohita fingerlings. Aqua Res. Vol. 30, No. 8, pp: 549-570.
33
Nguyen, N.; Davis, D.A. and Saoud, P., 2009. Evaluation of alternative protein sources to replace fish meal in practical diets for juvenile Tilapia, (Oreochromis Spp). Journal of the World Aquaculture Society. Vol. 40, pp: 113-121.
34
Obasa, S.O.; Dada, A.A. and Alegbeleye, W.O., 2006. Evaluation of pigeon pea (Cajanus cajan) as a substitute for soya bean meal in the diet of Nile tilapia ¢ngerlings. African Journal of Aquaculture. Vol. 23, pp: 51-59.
35
Olude, O.; George, F. and Alegbeleye, F., 2016. Utilization of autoclaved and fermented sesame seed meal in diets for Til-aqua natural male tilapia. Animal Nutrition. pp: 1-6.
36
Reddy, C.A., 1999. Feeding sesame seed meal. Poultry Internationa. Vol. l38, pp: 90-94.
37
Sardar, M.A.; Rand ha, W.A. and Prabhakar, R., 2009. Effects of dietary lysine and methionine supplementation on growth, nutrient utilization, carcass compositions and haemato biochemical status in Indian major carp, rohn fed soy protein based diet. Aquacul Nutri. Vol. 15, pp: 229-346.
38
Sedgwick, S.D., 1990. Trout Farming Handbook, fifth edition, Fishing news Books, 482 p.
39
Sinha, A.K.; Kumar, V.; Makkar, H.P.S.; De Boeck, G. and Becker, K., 2011. Non-starch polysaccharides and their role in fish nutrition d a review. Food Chem. Vol. 127, pp: 1409e26.
40
Soliman, A.K., 2000. Partial and complete replacement of soybean meal by roquette seed meal in diets of Nile tilapia, Oreochromis niloticus. In: Proceeding of Fifth International Symposiumon Tilapia in Aquaculture (ISTAV). pp: 209-214.
41
Watanabe, T. and Pongmaneerat, J., 1993. Potential of soybean meal as a protein source in extruded pellets for rainbow trout. Nippon Suisan Gakkaishi. Vol. 59, pp: 15-1423.
42
Webb, M.A.H.; Feist, G.W.; Foster, E.P.; Schreck, C.B. and Fitzpatrick, M.S., 2002. Potential classification of sex and stage of gonadal maturity of wild white sturgeon using blood plasma indicators. Transactions of the American Fishery Society. Vol. 131, pp: 132-142.
43
Wilson, R.P.; Freeman, D.W. and Poe, W.E., 1984. Three types of catfish o¡al meals for channel catfish fingerlings. The Progressive Fish Culturist. Vol. 46, pp: 126-132.
44
Ye, J.; Liu, X.; Wang, Z. and Wang, K., 2011. Effect of partial fish meal replacement by soybean meal on the growth performance and biochemical indices of juvenile Japanese flounder. Aquaculture International. Vol. 19, pp: 143-153.
45
Yue, Y.R. and Zhou, Q.C., 2008. Effect of replacing soybean meal with cottonseed meal on growth, feed utilization, and hematological indices for juvenile hybrid tilapia.Aquaculture. Vol. 284, pp: 185-189.
46
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی روند تغییرات برخی از فاکتورهای خون، ایمنی، یون ها، بافت شناسی بیضه و هورمونی ماهی سفید و رابطه آن با سن ماهی (Rutilus kutum) در فصول زمستان و بهار در منطقه چاف و چمخاله استان گیلان
هدف از تحقیق حاضر بررسی روند تغییرات برخی ازفاکتورهای خون، ایمنی، یون ها، بافت شناسی بیضه و هورمونی ماهی سفید و رابطه آن با سن ماهی(Rutilus kutum) در فصول زمستان و بهار در منطقه چاف وچمخاله استان گیلان از بهمن 1394 تا اردیبهشت 1395در منطقه چمخاله و نیز تعیین رابطه رگرسیونی سن ماهی و میزان هورمون ها بوده است. جهت انجام تحقیق حاضر، 24 ماهی مولد نرصید گردید. نمونه های خون جهت اندازه گیری فاکتورهای خونی (گلبول های سفید و قرمز، هموگلوبین، هماتوکریت)، ایمنی (IgM و لیزوزیم)، یون ها (کلسیم، سدیم، پتاسیم و منیزیم) و هورمون ها (استرادیول و پروژسترون) جمع آوری گردید. مقاطع بافتی نیز از بیضه تهیه و مورد مشاهده قرار گرفت. هم چنین از فلس ماهیان جهت تعیین سن نمونه برداری شد. نتایج این تحقیق حاکی از افزایش میزان هورمون های مورد بررسی هم زمان با تکامل بیضه بوده است. هم چنین تفاوت معنی داری در میزان هورمون ها در برخی از ماه های نمونه برداری در این منطقه مشاهده و بیش ترین میزان هورمون های پروژسترون و استرادیول در منطقه چمخاله به ترتیب در ماهیان 4 و 5 ساله مشاهده شد (پروژسترون چمخاله 0/02±0/33 و چاف 0/01±0/31 در اردیبهشت ماه). نتایج این تحقیق حاکی از بروز تغییرات در فاکتورهای ا ندازه گیری شده هم زمان با تکامل بیضه بوده است. به طوری که میزان هورمون پروژسترون طی ماه های مختلف تغییرات معنی داری نمود و در اردیبهشت ماه به بیش ترین مقدار رسید (0/05>P) اما میزان استرادیول از بهمن ماه شروع به افزایش نمود (0/05>P) و تا اردیبهشت ماه در اوج باقی ماند. (9/2±1/0) میزان یون ها نیز از اسفند یا بهمن ماه روندی کاهشی را درپیش گرفت و میزان آن ها در اردیبهشت ماه به کم ترین حد خود رسید کلسیم 0±12/5، منیزیم 0/15± 5/8، سدیم 2±145 و پتاسیم 0/05±0/7 (0/05>P). میزان برخی فاکتورهای خونی (ازجمله تعداد گلبول های سفید و قرمز، هموگلوبین وهماتوکریت) درمراحل نهایی رسیدگی جنسی افزایش معنی داری یافت. به طوری که گلبول های قرمز خون 100000±1850000، گلبول های سفید خون 350±6150، هموگلوبین 0/65±11/85، هماتوکریت 3/5±58/6 (0/05>p) اما میزان لیزوزیم و Igm در اردیبهشت ماه درکمترین میزان خود قرار داشتند، لیزوزیم 2± 23 و Igm 1±26 بود (0/05>P). در رابطه با میزان IgM سرم خون ماهی سفید نر دریای خزر طی ماه های بهمن تا اردیبهشت، تفاوت معنی داری در دو منطقه چاف و چمخاله، مشاهده نگردید و روند تغییرات این عامل تقریباً ثابت بوده است و مراحل مختلف رسیدگی جنسی طی ماه های منتهی به رسیدگی کامل جنسی و تکامل بیضه تاثیری بر تغییر میزان این عامل نداشته است.
http://www.aejournal.ir/article_81835_fff9626e80b86f85ca9ffc6a7a3818c4.pdf
2018-09-23
229
240
ماهی سفید دریای خزر (Rutilus kutum)
چاف
چمخاله
هورمون جنسی
بافت شناسی
لیزوزیم
اکرم
تهرانی فرد
akram.tehranifard95@gmail.com
1
گروه زیست شناسی دریا، واحدلاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
LEAD_AUTHOR
اعظم
مشفق
moshfeghazam@gmail.com
2
گروه زیست شناسی دریا، واحدلاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
AUTHOR
ساناز
نسرین نوکنده
nasrin.nokandeh@yahoo.com
3
گروه زیست شناسی دریا، واحدلاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
AUTHOR
آخوندیان، م.؛ سواری، ا.؛ سلامات، ن.؛ موحدی نیا، ع. و سالاری،م.،1394. تغییرات سطح پلاسمایی هورمون های استروئیدی و الکترولیت ها (کلسیم، سدیم و پتاسیم) طی مراحل مختلف چرخه تولیدمثلی ماهی کلمه خزری (Rutilus rutilus caspicus) در بندر ترکمن. اقیانوس شناسی. سال 6، شماره 21، صفحات 117 تا 126.
1
امینیان فتیده، ب.؛ حسین زاده صحافی، ه.؛ شعبانی، ع.؛ یغمایی، ف. و شفیعی ثابت، س.، 1387. تعیین مراحل رسیدگی جنسی ماهی سفید دریای مازندران با کمک شاخص های زیستی. نشریه علوم دانشگاه تربیت معلم. جلد 8، شماره 2، صفحات 107 تا 120.
2
ایمانپور، م.ر.؛ اسفندیاری ملکی، م. و پاکروان، س.، 1393. ترکیبات بیوشیمیایی مایع تخمدانی ماهی سفید(Rutilus frisii kutum) جنوب دریای خزر و تاثیر آن روی خصوصیات حرکتی اسپرم. مجله پژوهش های جانوری. جلد 27، شماره 3، صفحات 300 تا 306.
3
حسین زاده صحافی، ه.، 1380. بیولوژی تولیدمثل ماهی. انتشارات شرکت سهامی شیلات ایران.
4
حلاجیان، ع.؛ کاظمی، ر. و دژندیان، س.، 1384. مطالعه بافت شناسی ماهی سفید در نواحی جنوب دریای خزر در غیر از فصل تخم ریزی. ششمین همایش علوم و فنون دریایی.
5
خدادوست، ع.؛ ایمانپور، م.؛ خارا، ح. و تقی زاده، و.، 1394. بلوغ جنسی و سطوح هورمون های استروئیدی گنادی در اردک ماهی (Esox lucius) تالاب انزلی. نشریه توسعه آبزی پروری. سال 9، شماره 1، صفحات 33 تا 41.
6
شریف پور، ع.؛ سلطانی، م.؛ عبدالحی، ح. و قیومی، ر.، 1381. اثر بی هوش کنندگی اسانس گل میخک (Eugenia caryophyllata) در شرایط مختلف pH و درجه حرارت در بچه ماهی کپور معمولی. مجله علمی شیلات ایران. سال 11، شماره 4، صفحات 74 تا 59.
7
رفعتی، ه.؛ میرواقفی، ع. و سلطانی، م.، 1394. بررسی تغییرات آندروژنیک برخی شاخص های ایمنی و خون ماهی نر قزل آلای رنگین کمان در فصل تکثیر. مجله منابع طبیعی ایران. دوره 68، شماره 4، صفحات 545 تا 554.
8
فلاحتکار، ب. و پورحسین سارمه؛ س.، 1392. تغییرات بیوشیمیایی، استروئیدهای جنسی و پارامترهای هماتولوژیک در قبل و پس از تخم ریزی ماهی سوف سفید Sander lucioperca. مجله پژوهش های جانوری. جلد 26، شماره 3، صفحات333 تا 343.
9
فرزادفر، ف.؛ حیدری، ب. و آقامعالی، م.، 1392. بررسی تاثیر رسیدگی جنسی بر میزان لیزوزیم و پروتئین تام سرم خون جنس نر ماهی سفید دریای خزر. فیزیولوژی و بیوتکنولوژی آبزیان. سال 1، شماره 2، صفحات37 تا 54.
10
فرزادفر، ف.؛ حیدری، ب. و غفوری رحیم آبادی، ز.، 1392. مورفوهیستولوژی گناد ماهی سفید (Rutilus frisii kutum) . مجله اقیانوس شناسی. سال 4، شماره 16، صفحات 15 تا 22.
11
Abbasi, F.; Oryan, S. and Matinfar, A., 2009. Changes in sex hormones during the development of the ovaries coioides(Epinephelus coioides) in Persian Gulf. Research and development in aquaculture. Vol. 79, pp. 72-80.
12
Alagappan, K.; Deivasigamani, B.; Kumaran, S. and Sakthivel, M., 2009. Histological alterations in Esturian Catfish(Arius maculatus)due to hydrophila infection. World Journal Fish and Marine Science. Vol.1, No. 3, pp: 185-189.
13
Aminian Fatideh, B. 2006. Determin sexual maturation stages of Rutilus frisii kutum in Caspian sea by biological Indicators. Science journal of Tarbiat Moalem. Vol.8, No. 2, pp: 107-120.
14
Biswas, S.; Fostier, A. and Williot, P., 1993. In: Manual of method in Fish Biology.New Dehli: South Asian Publisher. pp: 79-91.
15
Blazer, V.S., 2002. Histopathological assessment of gonadal tissue in fishes. Fish Histol & Pathol. Vol. 26, pp: 85-101.
16
Cuisset, B., 1995. Occurance and in vitro biosynthesis of 11-ketotestosteron in Siberian sturgeon, Acipenser baeri,maturing females. Fish physiology and Biochemistry.Vol. 14, pp: 313-322.
17
Eigdery, Q., 2002. Histology study materials growth genital sex find hermaphrodite fish sauce over large Barbus capito. M.Sc . Thesis fisheris , Tehran University. 96 P.
18
El-Gharabawy, M.; Fahmy, A.F. and Assem, S.S., 2007. Steroid hormone in serum of male Mugil cephalus from lake Quaron in relation to ultrastructure of steroidogenic secreting tissue. Egyption Journal of Agricultureresearch.Vol. 33, No. 3, pp: 156-178.
19
Farzadfar, F.; Heidari, B. and Ghafori Rahimabadi, Z., 2013. Morphohistology gonads of Rutilus frsii kutum. Journal of Oceanography. Vol. 4, No. 16, pp: 15-22.
20
Flahatkar, B. and Pourhossein, S., 2005. Biochemical changes, sex steroids and hematological parameters before and after spawning white perch fish (Sander lucioperca). Journal of Animal Reseach. Vol. 26, No. 3, pp: 333-343.
21
Halajian, A.; Kazemi, R. and Dejandian, S., 2007. Histological study of Rutilus frisii kutum iIn the non spawning season in the southern part of the Caspian Sea. Tehran, 6th Iranian Congress of Marine Science and Technology.
22
Heidari, B.; Roozat, S.A. and Yavari, L., 2010. Changes in plasma levels of steroid hormones during oocyte development of Caspian Kutum (Rutilus frisii kutum). Animal Reproduction. Vol. 7, No. 4, pp: 373-381.
23
Johnson, L. and Casillas, E., 1998. The use of plasma parameters to predict ovarian maturation stage in English Sole Parophrysvetulus giard and Epinephelusmorio. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 151, pp: 257-270.
24
Khodadost, A.; Imanpour , M.; Khara, H. and Taghizadeh, V., 2016. Sexual Maturity and the level of gonadal steroid hormones in pike (Esox lucus) in Anzali Lagoon. Expansion of aquaculture. Vo. 1, pp. 33-41.
25
Kobayashi, D.; Tanaka, M.; Fukada, S. and Nagahama, Y.S., 1996. Steroidogenesis in the ovarian follicles of the medaka (Oryzias lapipes) during vitellogenesis and oocyte maturation. Zoology Science.Vol. 13, pp: 921-927.
26
Lee, W. and Yang, S.W., 2002. Relationship between ovarian development and serum levels of gonadal steroid hormones, and induction of oocyte maturation and ovulation the cultured female Korean spotted sea bass (Lateolabrax maculates). Aquaculture.Vol. 207, pp: 169-183.
27
Luteus, P., 1987. Oocyte maturation in white sturgeon Acipenser transmontanus;some mechanism and applications. Environmental Biology of Fishes.Vol. 14, No. 1, pp: 87-92.
28
Nagahama, Y., 1994. Endocrine regulation of gametogenesis in fish. International Journal of Development Biology.Vol. 38, pp: 217-229.
29
Nagahama, Y.; Yoshikuni, M.; Sakai, N. and Tanaka, M., 1993. Molecular endocrinology of oocyte growth and maturation in fish. Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 11, pp: 13-14.
30
Nikolsky, G., 1963. The Ecology of Fishes.London: Academic.
31
Pavlidis, G., 2000. Seasonal variation and maturity stages in relation to diffrences in serum levelsof gonadal steroids,vitellogenin and thyroid hormones in the common dentex (Dentex dentex). General and Comparative Endocrinology. Vol. 118, pp: 14-25.
32
Rezai, M.; Shabani, A.; Shabanpour, M. and Kshyri, B., 2011. The study process of gonadal changes in Rutilus frisii kutum in spawning season changes in the Caspian Sea province of Gilan. Environmental Science and Technology. Vol. 18, No. 2, pp: 177-189.
33
Schulz,, R. and Miura, T., 2002. Spermatogenesis and its endocrine regulation. Fish Physiology and Biochemistry.Vol. 26, pp: 43-56.
34
Shafie sabet, S.; Imanpour, M.; Aminian Fatideh, B. and Gorgin, S., 2012. The study process of changes in Rutilus frisii kutum gonads in spawning season in Guilan province (Kiashahr port). Environment Science and Technology. Vol. 18, No. 2, pp: 177-189.
35
Sharifpour, A.; Soltani, M.; Abdulhai, H. and Ghayomi, R., 2003. The effect of anesthetic Clove oil (Eugenia caryophyllata) In different situationspH,temperatureIn children, common carp (Cyprinus carpio). Journal of Iran Fisheries. Vol. 11, No. 4, pp: 59-74.
36
Trofi Moazenzadeh, M.., 2015. Refrence itervals for haematological and plasma biochemical parameters in sobaity sea bream juveniles (Sparidentex hasta). Comparative Clinical Pathology. Vol. 24, pp: 1501-1507.
37
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی ساختار شیمیایی کلاژن ماهی سفید (Rutilus Kutum) از دریای خزر و کلاژن ماهی قباد Scomberomorus guttatus) ( از خلیج فارس
کلاژن دارای کاربردهای فراوانی در زمینه داروسازی و پزشکی، تهیه محصولات بهداشتی و آرایشی و صنایع غذایی میباشد. در سالهای اخیر توجه زیادی به جداسازی کلاژن از موجودات دریایی شده است که علت آن عدم محدودیت استفاده از آن در رژیم غذایی و عدم ایجاد خطر ابتلا به بیماریهای مسری میباشد. در این مطالعه به استخراج کلاژن ازپوست ماهی سفید از ماهیان اقتصادی دریای خزر و ماهی قباد یکی از گونههای تن ماهیان خلیج فارس پرداخته شده است. کلاژن پوست ماهی سفید و ماهی قباد بهروش اسید و باز استخراج گردید و سپس بهوسیله Pico.Tag ، SDS-PAGE، FTIR و اسپکتوفوتوگرافی UV مورد ارزیابی قرار گرفتند. نتایج براساسSDS-PAGE و ترکیبات اسیدهای آمینه نشان دادند که کلاژن پوست هر دو ماهی کلاژن نوع I و از دو زنجیره α (1α و2α) با وزن مولکولی kDa 130 و مقدار جرِئی β تشکیل شده است. همچنین تجزیه و تحلیل FTIR، ترتیبات مارپیچی از هر دو کلاژن را نشان داد و اسپکتروفتومتری UV در هر دو نمونه کلاژن پوست ماهی سفید و ماهی قباد حداکثر جذب را در 240 نانومتر نشان داد. میزان کلاژن استخراج شده از پوست ماهی سفید 15/6% و ماهی قباد 14/5% بود. تجزیه و تحلیل اسیدآمینه در کلاژنهای استخراج شده، مقدار بالایی از گلایسین را در هر دو نمونه کلاژن، ماهی سفید 182/5 residues بر 706/1 residues و ماهی قباد 188/6 residues بر 706/1 residues را نشان داد که آن یک سوم از کل اسیدهای آمینه محاسبه گردید و همچنین مقدار پرولین بهعنوان یک اسیدآمینه منحصر بهفرد در کلاژن ماهی سفید 89/6 residues بر 706/1 residues و در ماهی قباد residues 86/8 بر 706/1 residues بود.
http://www.aejournal.ir/article_81903_0b122534c5c076199d8de507d747c398.pdf
2018-09-23
241
250
ماهی سفید
ماهی قباد
کلاژن پوست ماهی
ترکیب اسیدآمینه
دریای خزر
خلیج فارس
سهیلا
نادری قره قشلاق
soheila_naderi2@yahoo.com
1
گروه زیست شناسی دریا، واحد علوم و تحقیقات تهران، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
شهلا
جمیلی
shahlajamili45@yahoo.com
2
سازمان تحقیقات آموزش وترویج کشاورزی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، تهران، ایران
LEAD_AUTHOR
محمد جواد
فاطمی
mjfatemi41@gmail.com
3
گروه جراحی پلاستیک و ترمیمی، مرکز تحقیقات سوختگی، دانشگاه علوم پزشکی ایران، بیمارستان حضرت فاطمه (س)، تهران، ایران
AUTHOR
علی محمد
شریفی
sharifalim@gmail.com
4
گروه فارماکولوژی، دانشکده علوم پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران، ایران
AUTHOR
محمد رضا
نورانی
nmr41@yahoo.com
5
گروه میکروبیولوژی کاربردی، دانشگاه علوم پزشکی بقیه الله، تهران، ایران
AUTHOR
رحیمی، م.؛ خواجوی، ر. و مهدویهزاوه، م.، 1389. تولید کلاژن نوع اول و بهکارگیری آن در مصارف پزشکی. مجله علوم پزشکی دانشگاه تهران. شماره 4، صفحات 246 تا 251.
1
رضویصیاد، پ.، 1369. ارزیابی ذخایر و مدیریت ماهیان استخوانی و اقتصادی دریای مازندران. شرکت سهامی شیلات ایران.
2
قاسماف، س.، 1372. دریای خزر. ترجمه: عادلی، ا.، 1379. مرکز تحقیقات شیلاتی انزلی.56 صفحه.
3
کازانچف، ا.ن.، 1981. ماهیان دریای خزر و حوزه آبریز آن. ترجمه: شریعتی، ا.، 1371. شرکت سهامی شیلات ایران. 171 صفحه .
4
Abdoli, A., 1999. The Inland Water Fishes of Iran. Natural and Wild Life Museum of Iran, Tehran. pp: 198-200.
5
Abedin, M.Z.; Karim, A.A.; Gan, C.Y.; Ghazali, F.C.; Barzideh, Z.; Zzaman, W. and Zaidul, I.S.M., 2015. Identification of angiotensin I converting enzyme inhibitory and radical scavenging bioactive peptides from sea cucumber (Stichopus vastus) collagen hydrolysates through optimization. International Food Research Journal. Vol. 22, No. 3, pp: 1074-1082.
6
AlizadehNodeh, M.; Moradi, Z. and Nourani, MR., 2014. Isolation and Purification of Collagen from the Skin of Black Pomfret (Parastromateus niger) for Tissue Engineering Purpose. Journal of Appleid Tissue Engineering. Vol. 1, No. 1, pp: 18-21.
7
Barzideh, Z.; Latiff, A.A.; Gan, C.Y.; Abedin, M. and Alias, A.K., 2014. ACE inhibitory and antioxidant activities of collagen hydrolysates from the ribbon jelly fish (Chrysaora sp.). Food Technology and Biotechnology. Vol. 52, No. 4, pp: 495-504.
8
Balian, G.; Bowes, JH.; In, A.G.; Ward, K. and Courts, A., 1977. The science and technology of gelatin. London: Academic Press. pp: 1-30.
9
Bernardini, R.D.; Mullen, A.M.; Bolton, D.; Kerry, J.; O’neill, E. and Hayes, M., 2012. Assessment of the Angiotensin-I-converting enzyme (ACE-I) inhibitory and antioxidant activities of hydrolysates of bovine brisket sarcoplasmic proteins produced by papain and characterisation of associated bioactive peptidic fractions. Meat Science. Vol. 90, No. 1, pp: 226-235.
10
Bidlingmeyer, B.A.; Cohen, S.A. and Tarvin, L., 1984. Rapid analysis of amino acids using pre-column derivatisation. Journal of Chromatography. Vol. 336, pp: 93-104.
11
Cao, H. and Xu, S.Y., 2008. Purification and characterization of type II collagen from chick sternal cartilage. Food Chem. Vol. 108, pp: 439-445.
12
Collette, B.B.; Carpenter, K.E. and Niem, V., 2001. The Living Marine Resources of the Western Central Pacific, Scombridae, Tunas (also, albacore, bonitos, mackerels, seerfishes and Wahoo). FAO Species Identification Field Guide for Fishery Purposes. FAO Publication, Rome. pp: 3721-3756.
13
Ding J.F.; Li, Y.Y.; Xu, J.J.; Su, X.R.; Gao, X. and Yue, F.P., 2011. Study on effect of jelly fish collagen hydrolysate on anti-fatigue and anti-oxidation. Food Hydrocolloids. Vol. 25, No. 5, pp: 1350-1353.
14
Duan, R.; Zhang, J.; Du, X.; Yao, X. and Konno, K., 2009. Properties of collagen from skin, scale and bone of carp (Cyprinus carpio) food chemistry. Vol. 112, pp: 702-706.
15
Edwards, H.G.M.; Farwell, D.W.; Holder, J.M. and Lawson, E.E., 1997. Fouriertransform Raman spectroscopy of ivory: II. Spectroscopic analysis and assignments. Journal of Molecular Structure. Vol. 435, pp: 49-58.
16
Eastoe, J.E., 1958. The Amino Aside Composition of Fish Collagen and Gelatin. The British Gelatin and Glue Research Association, 2α Dalmeny Avenue, London. No. 7, 57 p.
17
Friess, W., 1998. Collagen biomaterial for drug delivery. Eur. J. Pharm. Biopharm. Vol. 45, pp: 113-136.
18
Falahatkar, B.; Poursaeid, S.; Ershad Langrodi, H.; Efatpanah, I.; Meknatkhah, B. and Rahmati, M., 2013. Spawning induction in Kutum, Rutilus frisii kutum (Kamensky), with different hormones: Analysis of hormone profiles and induced spawning success., Arch. Pol. Fish. Vol. 21, pp: 271-281,
19
Foegeding, E.; Lanier, T.C. and Hultin, H.O., 1996. Characteristics of edible muscle tissue. In O. R. Fennema (Ed.), Food chemistry (3rd ed.,). New York: Marcel Dekker. pp: 879–942.
20
Gómez-Guillén, M.C.; Giménez, B.; López-Caballero, M.A. and Montero, M.P., 2011. Functional and bioactive properties of collagen and gelatin from alternative sources: A review. Food Hydrocolloids. Vol. 25, No. 8, pp: 1813-1827.
21
Hema, G.S.; Shyni, K.; Suseela Mathew, R.; Ninan, G. and Lakshmanan, P.T., 2013. A simple method for isolation of fish skin collagen- biochemical characterization of skin collagen extracted from Albacore Tuna (Thunnus Alalunga), Dog Shark (Scoliodon Sorrakowah), and Rohu (Labeo Rohita). Scholars Research Library, Annals of Biological Research. Vol. 4, No. 1, pp: 271-278.
22
Jayakrishnan, A. and Jameel, S.R., 1996. Glutaraldehyde as a fixative in bioprostheses and drug delivery matrices. Biomaterials. Vol. 17, pp: 471-484.
23
Jongjareonrak, A.; Benjakul, S.; Visessanguan, W.; Nagai, T. and Tanaka, M., 2005. Isolation and characterisation of acid and pepsin-solubilised collagens from the skin of Brownstripered snapper (Lutjanus vitta). food chemistry. Vol. 93, pp: 475-484.
24
Jongjareonrak, A.; Benjakul, S.; Visessanguan, W. and Tanaka, M., 2005. Isolation and characterization of collagen from big eye snapper (Priacanthus marcracanthus) skin. Journal of the Science of Food and Agriculture. Vol. 85, pp: 1203-1210.
25
Kim, S.K. and Mendis, E., 2006. Bioactive compounds from marine processing byproducts a review. Food Research Intl. Vol. 39, pp: 383-393.
26
Laemmli, U.K., 1970. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. nature. Vol. 227, pp: 680-685.
27
Lafarga, T. and Hayes, M., 2014. Bioactive peptides from meat muscle and by-products: generation, functionality and application as functional ingredients. Meat Science. Vol. 98, No. 2, pp: 227-239.
28
Love, R.M.; Yamaguchi, K.; Creach, Y. and Lavety, J., 1976. The connective tissue and collagen of cod during starvation. Comparative Biochemistry and Physiology Part B. Vol. 55, pp: 487-492.
29
Lee, C.H.; Singla, A. and Lee, Y., 2002. Biomedical applications of collagen. Int. J. Pharm. Vol. 221, pp: 1-22.
30
wang, L.; An, X.; Xin, Z.; Zhao, L. and Hu, Q., 2007. Isolation and Characterization of Collagen from the Skin of Deep Sea Red fish (Sebastes mentella). Journal of food Science. Vol. 72, pp: 450-455.
31
Liu, H.Y.; Li, D. and Guo, S.D., 2007. Studies on collagen from the skin of channel catfish (Ictalurus punctaus). Food Chemistry. Vol. 101, pp: 621-625.
32
Montero, P.; Borderias, J.; Turnay, J. and Leyzarbe, N.A., 1990. Characterization of hake (Merluccius merluccius L.) and trout (Salmo irideus Gibb) collagen. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 38, pp: 604-609.
33
Muyonga, J.H.; Cole, C.G.B. and Duodu, K.G., 2004. Characterization of acid soluble collagen from skins of young and adult Nile perch (Lates nilotics). Food Chemistry. Vol. 85, pp: 81-89.
34
Nagai, T. and Suzuki, N., 2000. Isolation of collagen from fish waste material skin, bone and fins food chemistry. Vol. 68, pp: 277-281.
35
Nagai, T.; Araki, Y. and Suzuki, N., 2002. Collagen of the skin of ocellate puffer fish (Takifugu rubripes). Food Chemistry. Vol. 78, pp: 173-177.
36
Ogawa, M.; Portier, R.J.; Moody, M.W.; Bell, J.; Schexnayder, M.A. and Losso, J.N., 2004. Biochemical properties of bone and scale collagens isolated from the subtropical fish black drum (Pogonia cromis) and sheepsheadseabream (Archosargus probato cephalus). food chemistry. Vol. 88, pp: 495-501.
37
Pachence, J.M., 1996. Collagen-Based Devices for Soft Tissue Repair. J. Biomed. Res. (Applied Biomaterials). Vol. 33, pp: 35-40.
38
Payne, K.J. and Veis, A., 1988. Fourier transform IR spectroscopy of collagen and gelatin solutions: Deconvolution of the Amide I band for conformational studies. Biopolymers. Vol. 27, pp: 1749-1760.
39
Palpandi, C.; Ramasamy, P.; Rajinikanth, T.; Vairamani, S. and Shanmugam, A., 2010. Extraction of Collagen from Mangrove Archeaogastropod Nerita (Dostia) crepidularia Lamarck, 1822. American-Eurasian Journal of Scientific Research. Vol. 5, No. 1, pp: 23-30.
40
Saiga, A.; Iwai, K.; Hayakawa, T.; Takahata, Y.; Kitamura, S.; Nishimura, T. and Morimatsu, F., 2008. Angiotensin I-converting enzyme inhibitory peptides obtained from chicken collagen hydrolysate. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 56, No. 20, pp: 9586-9591.
41
Shahidi, F., 1994. Seafood processing by-products. In: Shahidi F, Botta JR, editors. Seafoods chemistry, processing, technology and quality. Glasgow: Blackie Academic Professional. pp: 11-26.
42
Sato, K.; Yoshinaka, R.; Sato, M. and Ikeda, S., 1986. A Simplified Method for Determining Collagen in Fish Muscle. Bulletin of the japanese society of scientific fisheries. Vol. 52, No. 5, pp: 889-893.
43
Senaratne, L.S.; Park, P.J. and Kim, S.K., 2006. Isolation and characterization of collagen from brown backed toadfish (Lago cephalus gloveri) skin. Bioresource Technology. Vol. 97, pp: 191-197.
44
Siddeek, M.S.M.; Fouda, M.M. and Hermosa Jr., G.V., 1999. Demersal fisheries of the Arabian Sea, the Gulf of Oman and the Persian Gulf. Estuar. Coast. Shelf Sci. Vol. 49, pp: 87-97.
45
Singh, P.; Benjakul, S.; Maqsood, S. and Kishimura, H., 2011. Isolation and characterisation of collagen extracted from the skin of striped catfish (Pangasianodon hypophthalmus). Food Chemistry. Vol. 124, No. 1,
46
pp: 97-105.
47
Sionkowska, A.; Kozłowska, J.; Skorupska, M. and Michalska, M., 2015. Isolation and characterization of collagen from the skin of Brama australis. Int J Biol Macromol. Vol. 80, pp: 605-609.
48
Tylingo, R.; Mania, S.; Panek, R.; Piatek, R. and Pawlowicz, R., 2016. Isolation and Characterization of Acid Soluble Collagen from the skin of African Catfish (Clarias gariepinus), Salmon (Salmo salar) and Baltic Cod (Gadus morhua). J Biotechnol Biomater. Vol. 6, pp: 234-239.
49
Voet, D.; Voet, J. and Pratt, C.F.D.B., 2006. Fundamentos de bioquímica. 3ª Ed. Porto Alegre: Armed. 42 p.
50
Wang, J.; Wang, Y.; Tang, Q.; Wang, Y.; Chang, Y.; Zhao, Q. and Xue, C., 2010. Antioxidation activities of low-molecular-weight gelatin hydrolysate isolated from the sea cucumber Stichopus japonicus. Journal of Ocean University of China. Vol. 9, No. 1, pp: 94-98.
51
Ward, A.G. and Courts, A., 1977. The Science and Technology of Gelatin. Academic Press, London. 564 p.
52
Xu, R.; Chen, Y.J.; Wan, D.R. and Wang, J., 2012. Identification of four Sedum plant medicines by fourier transform infrared spectra. Phcog Mag. Vol. 8, pp: 107-110.
53
Yan, M.; Li, B.; Zhao, X.; Ren, G.; Zhuang, Y.; Hou, H.; Zhang, X.; Chen, L. and Fan, Y., 2008. Characterization of acid-soluble collagen from the skin of walleye pollock (Theragra chalcogramma). Food Chemistry. Vol. 107, pp: 1581-1586.
54
Zhang, J.; Duan, R.; Tian, Y. and Konno, K., 2009. Characterisation of acid-soluble collagen from skin of silver carp (Hypophthalmichthys molitrix). Journal of food chemistry. Vol. 116, pp: 318-322.
55
Zeng, S.K.; Zhang, C.H.; Lin, H.; Yang, P.; Hong, P.Z. and Jiang, Z., 2009. Isolation and characterisation of acid-solubilised collagen from the skin of Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Journal of food chemistry. Vol. 116, pp: 879-883.
56
Falahatkar, B.; Poursaeid, S.; Ershad Langrodi, H.; Efatpanah, I.; Meknatkhah, B. and Rahmati, M., 2013. Spawning induction in Kutum, Rutilus frisii kutum (Kamensky), with different hormones: Analysis of hormone profiles and induced spawning success., Arch. Pol. Fish. Vol. 21, pp: 271-281.
57
Alberts, B.; Johnson, A.; Lewis, J.; Raff, M. and Roberts, K., 2002. Molecular Biology of the Cell. Garland Science: New York, USA.
58
Van der Rest, M. and Garrone, R., 1991. Collagen family of proteins. FASEB J.Vol. 5, pp: 2814-2823.
59
Prockop, D.J. and Kivirikko, K.I., 1995. Collagens: Molecular biology, diseases, and potentials for therapy. Annu Rev Biochem. Vol. 64, pp: 403-434.
60
Yamada, S.; Yamamoto, K.; Ikeda, T.; Yanagiguchi, K. and Hayashi, Y., 2014. Potency of Fish Collagen as a Scaffold for Regenerative Medicine. Hindawi Publishing Corporation. 8 p.
61
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی و تحلیل وضعیت تنوع گونه ای سه ماهی کپور، کلمه و سفید استان گلستان طی سال های بهره برداری 1387-1384
مطالعه حاضر باهدف بررسی و تحلیل وضعیت صید پره ماهیان استخوانی استان گلستان در یک دوره سه ساله طی سالهای 87-1384 با بررسی آماری داده های موجود در تعاونی های صیادی و اداره کل شیلات استان صورت گرفته است.نتایج حاکی از آن است که طی این مدت اختلاف معنی دار آماری در سطح 0/05 بین تراکم و گونه ماهیان استخوانی صید شده برقرار بوده و صید روند نزولی دارد.در دوسال اول مطالعه تراکم صید ماهی کپور> سفید> کلمه بوده است. در سال 1386 ضمن تداوم روند کاهشی صید ماهی کپور نسبت به دوسال گذشته روند افزایشی صید ماهی سفید نسبت به سال های قبل به روشنی مشهود است و تراکم صید ماهیان نیز سفید> کپور> کلمه بوده است. به علاوه در طی این مدت بالاترین میزان صید برابر با 503525 کیلوگرم به ماهی سفید در سال 86 و حداقل آن نیز برابر با 864 کیلوگرم به ماهی کلمه اختصاص یافته است.
http://www.aejournal.ir/article_82202_31a3b4c328b51bccb8c36ff76752bf07.pdf
2018-09-23
251
256
صیده پره
ماهیان استخوانی
تراکم صید
استان گلستان
سمیه
نوده شریفی
snshfishery@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 487-49175
LEAD_AUTHOR
سید یوسف
پیغمبری
sypaighambari@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 487-49175
AUTHOR
سعید
گرگین
s.gorgin@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 487-49175
AUTHOR
اداره کل شیلات گلستان،واحد صید وبهرهبرداری شیلات استان گلستان. 1394 . لیست شرکت های تعاونی صید پره ماهیان استخوانی استان گلستان. 2صفحه.
1
عبدالملکی، ش.، 1385.بررسی روند تغییرات ذخایر ماهی سفید دریای خزر (ایران). مجله علمی شیلات ایران. جلد 15، شماره 2، صفحات 87 تا 100.
2
عبدالملکی، ش.؛ فضلی، ح.؛ صیادبورانی، م.؛ پورغلامی، ا.؛ بندانی، غ.ع.؛ عباسی، ک. و پیری، ح.، 1381. ارزیابی ذخایر ماهیان استخوانی دریای خزر در سال های 1380-1379. مرکز تحقیقات شیلاتی استان گیلان. بندر انزلی. 124صفحه.
3
فضلی، ح. و روحی، ا.، 1381. تاٌثیر احتمالی ورود شانه دار بر روی ترکیب گونه ای، صید و ذخایر کیلکا ماهیان در حوزه جنوبی دریای خزر سال های1380-1376. مجله علمی شیلات ایران. سال 1، شماره 11، صفحات 63 تا 72.
4
قربانی، ر.؛ یلقی، س. و عقیلی، م.، 1389. بررسی و تحلیل وضعیت صید شرکت های تعاونی صید پره ماهیان استخوانی استان گلستان در سال های بهره برداری 1385-1384. مجله شیلات دانشگاه آزاد اسلامی واحد آزاد شهر. سال3، شماره 4، صفحات 39 تا 47.
5
کازرونیمنفرد،م.،1384. صیادی در گیلان جدال با آب های سرد به خاطر صید چند ماهی. خبرگزاری قدس. 32 صفحه.
6
گیلانی، غ.ر.، 1390. بررسی روند صید ده ساله ماهیان سفید، کپور، کفال و کلمه طی سال های 1378-1387 در استان گلستان. پروژه کارشناسی مهندسی کشاورزی و منابغ طبیعی شیلات. دانشگاه آزاد اسلامی واحد بندر گز. 82 صفحه.
7
محمدنژادشموشکی، م.؛ دردیئی، خ.؛ رضایی شیرازی، ع. و یحیایی، م.، 1392. مطالعه روند صید سه ساله ماهیان استخوانی سفید (Rutilus frisii kutum)، کفال(Liza ssp) و کپورمعمولی (Cyprinus carpio) در سال های 1388-1390. مجله آبزیان و شیلات. سال 4، شماره 15، صفحات 27 تا 38.
8
یحیایی، م.، 1384. شروع صید ماهیان استخوانی در استان گلستان. اداره کل شیلات استان گلستان. 10صفحه.
9
Kamakim, P.I., Ushivtzev, A.M.; Shiganova, V.B.; Zhukova, T.; Aladin, O.; Wilson, N.; Harbison, S.I. and Dumont, H.J., 2000. Invasion of Caspian Sea by the comb jellyfish Mnemiopsis leidyi (Ctenophora). Biological invasions. Vol. 2, No. 2, pp: 255-258.
10
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی ترکیب گونه ای، ترکیب فراوانی طولی و میزان صید ضمنی در تورهای گوشگیر سطحی ماهی هوور معمولی در آب های شمال شرقی دریای عمان (سیستان و بلوچستان)
مطالعه حاضر با هدف بررسی ترکیب گونهای، ترکیب فراوانی طولی و میزان صید ضمنی در تورهای گوشگیر سطحی مخصوص صید ماهی هوور معمولی در شمال شرقی دریای عمان و صیدگاههای چابهار، کنارک و رمین (استان سیستان و بلوچستان) صورت پذیرفت. عملیات نمونه برداری توسط سه فروند قایق فایبرگلاس و لنج چوبی از مهرماه 1395 تا خردادماه 1396 انجام گرفت. ابزار صید شامل تورهای گوشگیر سطحی ماهی هوور معمولی با اندازه چشمههای 100 و 110 میلی متر مورد استفاده توسط قایقهای صیادی و اندازه چشمههای 130 و 165 میلی متر به صورت کشیده در تور گوشگیر لنج چوبی بود. در مجموع 15 گونه متعلق به 8 خانواده تون ماهیان (Scombridae)، نیزه ماهیان (Istiophoridae)، گالیت ماهیان (Coryphaenidae)، کوسه ماهیان (Alopiidae و Carcharhinidae)، گیش ماهیان (Carangidae)، کوترماهیان (Sphyraenidae) و یال اسبی ماهیان (Trichiuridae) ترکیب صید ضمنی را تشکیل دادند. از نظر ترکیب گونهای صید ضمنی، در تورهای مورد استفاده توسط قایق و لنج چوبی تفاوت معنی داری مشاهده شد. در تورهای مورد استفاده توسط قایق، کم ترین و بیش ترین میزان صید مربوط به گونه کوسه باله سیاه با 35 کیلوگرم و گونه زرده با 1622 کیلوگرم در کل دوره تحقیق بود. حداکثر صید در هر توراندازی مربوط به گونه زرده با 260 کیلوگرم در هر نوبت عملیات صید و توراندازی بود. بیش ترین میانگین صید (±انحراف معیار) در هر بار توراندازی نیز مربوط به گونه زرده با 9/26±47/71 کیلوگرم در هر بار توراندازی به دست آمد.در تورهای مورد استفاده توسط لنج چوبی، کم ترین و بیش ترین میزان صید مربوط به گونه کوسه دم دراز با 93 کیلوگرم و گونه گیدر با 90013 کیلوگرم در کل دوره تحقیق بود. حداکثر صید در هر توراندازی مربوط به گونه گیدر با 7820 کیلوگرم در هر نوبت عملیات صید و توراندازی مشاهده شد. بیش ترین میانگین صید (±انحراف معیار) در هر بار توراندازی نیز مربوط به گونه گیدر با 186/61±1250/18 کیلوگرم در هر بار توراندازی بود.
http://www.aejournal.ir/article_82464_9b41e8d9e1f97825f1a534a5b3a624e7.pdf
2018-09-23
257
264
ترکیب گونه ای
فراوانی طولی
صید ضمنی
تور گوشگیر سطحی
استان سیستان و بلوچستان
علی
صدوق نیری
ali_sadough@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی چابهار، چابهار
AUTHOR
احسان
کامرانی
ezas47@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی و جوی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، صندوق پستی: 3995
LEAD_AUTHOR
علی اصغر
خانی پور
aakhanipour@yahoo.com
3
پژوهشکده آبزیپروری آب های داخلی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، بندر انزلی، صندوق پستی: 66
AUTHOR
نیلس
مادسن
nm@bio.aau.dk
4
بخش فناوری محیط زیست، گروه شیمی و علوم زیستی، دانشگاه آلبورگ، دانمارک
AUTHOR
ایمان
سوری نژاد
i_sourinezhad@yahoo.com
5
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی و جوی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، صندوق پستی: 3995
AUTHOR
اسدی،ه.ودهقانیپشترودی،ر.،1375. اطلس ماهیان خلیج فارس و دریای عمان. سازمان تحقیقات و آموزش شیلات ایران. 226 صفحه.
1
پارسا، م.، 1391، مقایسه ترکیب طولی و گونهای صید با تورهای گوشگیر مولتی فیلامنت شیری با دو ضریب آویختگی 5/0 و 6/0 در استان بوشهر. پایاننامه کارشناسیارشد، دانشکده شیلات، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 86 صفحه.
2
پارسا، م.؛ پیغمبری، س.ی.؛ قربانی، ر. و شعبانی، م.ج.، 1391. بررسی ترکیب صید ضمنی (Bycatch) تورهای گوشگیر مولتیفیلامنت شیری (Spanish mackerel multifilament gill nets) در صیدگاههای استان بوشهر. همایش ملی آبزیان، بوشهر. صفحات 61 تا 62.
3
حسینی، س.ع.، 1380. بررسی وضعیت ذخایر تون ماهیان در دریای عمان- سواحل سیستان و بلوچستان، مرکز تحقیقات شیلاتی آبهای دور- چابهار. 90 صفحه.
4
خدادادی، ر.؛ بیات، ی.؛ گلستانی، ن. و کهفیزاده، ف.،1382. تعیین ترکیب طولی و گونهای تورهای گوشگیر شیری دو طبقه در شهرستاندیر (استان بوشهر)، گزارش نهایی طرح تحقیقاتی موسسه تحقیقات شیلات ایران، پژوهشکده میگوی کشور. 40 صفحه.
5
Abdulgader, E.A.A., 2001. Gillnet selectivity experiments in Bahrain waters on the Spanish Mackerel, Scomberomorus commerson (Lacepede) fishery. Arab Gulf Journal of Scientific Research. Vol. 19, No. 2, pp: 66-71.
6
FAO., 2000. Species summary for Scomberomorus guttatus (Indo pacific king mackerel). WWW.fishbase.Org.
7
FAO. 2014. The State of World Fisheries and Aquaculture. FAO Publishing, Rome, Italy. 243 P.
8
Fischer, W. and Bianchi, G., 1984. FAO species identification sheets for fishery purposes: Western Indian Ocean (Fishing Area 51), Food and Agriculture Organization of the United Nations.
9
Froese, R. and Pauly, D., 2015. FishBase (http://www.fishbase.org/). International Center for Living Aquatic Resources Management.
10
Ghotbeddin, N.; Javadzadeh, N. andAzhir, M.T., 2014. Catch per unit area of Batoid fishes in the Northern Oman Sea. Iranian J of Fisheries Sciences. Vol. 13, pp: 47-57.
11
Gillett, R., 2008. Global study of shrimp fisheries. FAO Fisheries Technical Paper. Rome, Italy. 359 P.
12
Gillett, R., 2011. By-catch in Small Scale Tuna Fisheries: A Global Study. FAO Fisheries and Aquaculture Technical Paper. Rome, Italy. No. 560, 116 p.
13
Goncalves, S.M.G.; Stergiou, I.K.; Hernando, A.j.; Puente, E.; Moutopoulos, K.D.; Arregi, L.; Soriguer, C.M.; Vilas, C.; Coelho, R. and Erzini, K., 2007. Discards from experimental trammel net in Southern European small scale fisheries. Fisheries Research. Vol. 88, pp: 5-14.
14
Hall, M.A.; Alverson, D.L. and Metuzals, K.I., 2000. By-catch: Problems and solutions. Marine Pollution Bulletin. Vol. 41, pp: 204-219.
15
Hosseini, S.A., 2002. Some biological aspects of Thunnus albacares and Katsuwonus pelamis in Oman Sea (Sistan-o Balochestan Province). Iranian Scientific Fisheries Journal. Vol. 11, No. 1, pp: 35-62.
16
Julie, U.; Tim, A.; David, S. and Ainghua, Z., 2015. Social Issues in Sustainable Fisheries Management. Springer Netherlands Publisher. 355 P.
17
Kaymaram, F. and Darvishi, M., 2012. Growth and mortality parameters of Euthynnus affinis in the northern part of the Persian Gulf and Oman Sea. IOTC. Second Working Party on Neritic Tunas. Malaysia. 14 P.
18
Kelleher, K., 2005. Discards in the world marine fisheries an update. FAO Fisheries Technical Paper 470. Rome, Italy.
19
Lewison, R.L.; Crowder, L.B.; Read, A.J. and Freeman, S.A., 2004. Understanding impacts of fisheries bycatch on marine mega fauna. Trends in Ecology & Evolution. Vol. 19, No. 11, pp: 598-604.
20
Mendonca, J.T. and Pereira, A.L.C., 2014. Management of gillnet fisheries in the south coast of the state of São Paulo, Brazil. Annals of the Brazilian Academy of Sciences. Vol. 86, No. 3, pp: 1227-1237.
21
Moazzam, M. and Nawaz, R., 2014. By-catch of tuna gillnet fisheries of Pakistan: A serious threat to non-target, endangered and threatened species. Journal of the Marine Biological Association of India. Vol. 56, No.1, pp: 85-90.
22
Pauly, D.; Christensen, V.; Pitcher, T.J. and Walters, C.J., 2002. Towards sustainability in world fisheries. Nature, Vol. 418, pp: 689-695.
23
Queirolo, D.; Erzini, K.; Hurtado, C.F.; Gaete, E. and Soriguer, M.C., 2011. Species composition and bycatch of a new crustacean trawl in Chile. Fisheries Research. Vol. 110, No. 1, pp: 149-159.
24
Robins, J.B.; Campbell, M.J. and Mcgilvray, J.G., 1999. Reducing prawn-trawl bycatch in Australia: An overview and an example from Queensland. Marine Fisheries Review. Vol. 61, No. 3, pp: 46-55.
25
Rochet, M.J.; Isabelle, P. and Verena, M., 2002. An analysis of discards from the French trawler fleet in the Celtic Sea. ICES J of Marine Science. Vol. 59, pp: 538-552.
26
Worm, B.; Barbier, E.B.; Beaumont, N.; Duffy, J.E.; Folke, C. and Halpern, B.S., 2006. Impacts of biodiversity loss on ocean ecosystem services. Science. Vol. 314, No. 5800, pp: 787-790.
27
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه برخی پارامترهای ایمنی غیراختصاصی موکوس پوست گاوماهی زرد و گاوماهی خالدار
تحقیق حاضر با هدف مقایسه پارامتر های ایمنی موکوس پوست گاوماهی زرد (Neogobius pallasi) و گاوماهی خالدار (Neogobius melanostomus) انجام شد. از تعداد 10 عدد ماهی بهترتیب 5 عدد از هر گونه نمونهبرداری موکوس صورت گرفته و فاکتورهای ایمنی غیراختصاصی شامل: پروتئین محلول، لیزوزیم، آلکالین فسفاتاز قلیایی و ایمنوگلوبولین کل موکوس دو گونه اندازهگیری شد. پس از پایان آزمایش مشخص شد که میزان پروتئین محلول (بهترتیب 0/22±3/14 و 0/32±1/23)، ایمنوگلوبولین کل (بهترتیب 0/02±0/48 و 0/12±1/09)، آلکالین فسفاتاز (بهترتیب 0/89±41/19 و 1/52±30/88) و مقدار لیزوزیم (بهترتیب 1/00±10/60 و 0/67±8/87) بود. اختلاف معنیداری بین سایر پارامترهای اندازهگیری شده در دو گونه وجود داشت (0/05>P) و بهطورکلی میزان این پارامترها در گاوماهی زرد بالاتر از گاوماهی خالدار بود. در مجموع با توجه به نتایج بهدست آمده میتوان گفت موکوس میتواند نقش مهمی در ایمنی غیراختصاصی داشته باشد و تفاوتهای دو گونه در مورد واکنش به شرایط استرسزا را میتوان تا حدودی به پارامترهای ایمنی غیراختصاصی موکوسی نسبت داد.
http://www.aejournal.ir/article_82473_e74a048e8e65517be141964296a19d47.pdf
2018-09-23
265
270
موکوس
لیزوزم
آلکالین فسفاتاز قلیایی
ایمونوگلبولین
مرجان
حسینی
marjanhoseini1370@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 487-49175
LEAD_AUTHOR
حامد
کلنگی
kolangi@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 487-49175
AUTHOR
حامد
آزادی
azadi404@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 487-49175
AUTHOR
امید
امیری
omid_amiri@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، صندوق پستی: 487-49175
AUTHOR
Abraham, S.M.; Sharon, N. and Ofek, I., 1999. Adhesion of bacterial to mucosal surfaces. Mucosal Immunology. Academic Press, San Diego, London. Vol. 3, pp: 31-42.
1
Agarwa, S.K.; Banerjee, T.K. and Mittal, A.K., 1979. Physiological adaptation in relation to hyperosmotic stress in the epidermis of a fresh water teleost Barbus sophor (Cypriniformes, Cyprinidae): a histochemical study. Z. Mikrosk. Anat. Forsch. Vol. 93, pp: 51-64.
2
Alexander, J.B. and Ingram, G.I., 1992. Non cellular non specific defence mechanisms of fish. Annu. Rev. Fish Dis. Vol. 2, pp: 249-279.
3
Choi, S.H.; Park, K.H.; Yoon, T.H.; Kim, J.B.; Jang, Y.S. and Choe, C.H., 2008. Dietary Korean mistletoe enhances cellular non-specific immune responses and survival of Japanese eel (A. japonica). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 24, pp: 67-77.
4
Clark, DP.; Durell, S.; Maloy, WL.; Zasloff, M. and Rana, L., 1994. A novel antimicrobial peptide from bullfrog (Rana catesbeiana) skin, structurally related to the bacterial antibiotic, polymyxin. J Biol Chem. Vol. 14, pp: 10849-10855.
5
Dhotre, M.A.; Bansode, P.D. and Shembekar, V.S., 2013. Extraction, Biochemical characterization and antibacterial activity of fish mucus. Indian Streams Res J. 2 Suppl. Vol. 12, pp: 1-8.
6
Edwards, E.A. and Twomey, K.A., 1982. Habitat susceptibility index models: common carp. U.S. Dept. Int. FishWildl. Serv. FWS/OBS-82/10.12. pp: 1-28.
7
Ellis, A.E., 1974. Non-specific defense mechanisms in fish and their role in disease processes. Dev. Biol. Stand.Vol. 49, pp: 337-352.
8
Fagan, M.; O'Byrne-Ring, N.; Ryan, R.; Cotter, D.; Whelan, K. and Mac Evilly, U., 2003. A biochemical study of mucus lysozyme, proteins and plasma thyroxine of Atlantic salmon (Salmo salar) during smoltification. Aquaculture. Vol. 222, pp: 287-300.
9
Fast, M.D.; Sims, D.E., Burka, J.F.; Mustafa, A. and Ross, N.W., 2002. Skin morphology and humoral non-specific defence parameters of mucus and plasma in rainbow trout, coho and Atlantic salmon. Comp. Biochem. Physiol. Vol. 132, pp: 645-657.
10
Hankock, R.E. and Diamond, G., 2000. The role of cationic antimicrobial peptides in innate host defences. Trends in Microbiology. Vol. 8, pp: 402-410.
11
Harris, J.E.; Watson, A. and Hunt, S., 1973. Histochemical analysis of mucous cells in the epidermis of brown trout Salmo trutta L. J Fish Biol. Vol. 5, pp: 345-351.
12
Hellio, C.; Pons, A.M.; Beaupoil, C.; Bourgougnon, N. and Gal, Y.L., 2002. Antibacterial, antifungal and cytotoxic activities of extracts from fish epidermis and epidermal mucus. Int. J. Antimicrob. Agents. Vol. 20, pp: 214-219.
13
Iger, Y. and Abraham, M., 1994. The process of skin healing in experimentally wounded carp. J. Fish Biol. Vol. 36, pp: 421-437.
14
Ingram, G.A., 1980. Substances involved in the natural resistance of fish to infection, a review. J. Fish Biol. Vol. 16, pp: 23-60.
15
Jung, T.S.; Castillo, C.S.D.; javaregowda, P.K.; Dalvi, R.S.; Nho, S.W., Park, S.B.; Jang Cha, I.S.; Sumg, I.S., Hikima, J. and Aoki, T., 2012. Seasonal variation and comparative analysis of non-specific humoral immune substances in the skin mucus of olive flunder (Paralihthys olivaceus). Developmental & Comparative Immunology. Vol. 14, pp: 23-34.
16
Kaattari, S.L. and Piganell, J.D., 1996. The specific immune system: humoral defense. In: Iwama, G., Nakanishi, T. (Eds.), The Fish Immune System. Academic press, NewYork. Vol. 25, pp: 207-254.
17
Kitani, Y.; Kikuchi, N.; Zhang, G.; Ishizaki Shimakura, K.; Shiomi, K. and Nagashima, Y., 2008. Antibacterial action of L-amino acid oxidase from the skin mucus of rockfish Sebastes schlegelii. Comp. Biochem. Physiol. Vol. 149, pp: 394-400.
18
Laemmli, U.K., 1970. Cleavage of structural proteins during the assembly of the head of bacteriophage T4. Nature. Vol. 227, pp: 680-685.
19
Negus, V.E., 1963. The functions of mucus. Acta oto laryngol. Vol. 56, pp: 204-214.
20
Pickering, A., 1974. The distribution of mucus cells in the epidermis of the brown trout Salmo trutta (L.) and the char Salvelinus alpinus (L). J. Fish Biol. Vol. 6, pp: 111-118.
21
Rao, V.; Marimuthu, K.; Kupusamy, T.; Rathinam, X.; Arasu, MV. and Al-Dhabi, N.A., 2015.Defense properties in the epidermal mucus of different freshwater fish species. AACL Bioflux. 8 Suppl. Vol. 2, pp: 184-194.
22
Ross, N.W.; Firth, K.J.; Wang, A.; Burka, J.F. and Johnson, S.C., 2000. Changes in hydrolytic enzyme activities of naïve Atlantic salmon Salmo salar skin mucus due to infection with the salmon louse Lepeophtheirus salmonis and cortisol implantation. Dis. Aquat. Org. Vol. 41, pp: 43-51.
23
Sangeetha, S.; Shawna, L.M. and Neil, W.R., 2007. A comparative study on innate immune parameters in the epidermal mucus of various fish species. Comparative Biochemistry and Physiology, Part B. Vol. 148, pp: 256-263.
24
Shephard, K.L., 1993. Mucus on the epidermis of fish and its influence on drug delivery. Adv. Drug Deliv. Rev. Vol. 11, pp: 403-417.
25
Subramanian, S.; MacKinnon, Sh.L. and Ross, N.W., 2007. A comparative study on innate immune parameters in the epidermal mucus of various fish species. Comprative Biochemistry and Physiology, Part B. Vol. 148, pp: 256-263.
26
Subramanian, S.; Ross, N.W. and MacKinnon, Sh.L., 2008. Comparison of antimicrobial activity in the epidermal mucus extracts of fish. Comparative Biochemistry and Physiology. Vol. 15, pp: 85-92.
27
Suzuki, Y.; Tasumi, S.; Tsutsui, Sh.; Okamoto, M. and Suetake, H., 2003. Molecular diversity of skin mucus lectins in fish. Comprative Biochemistry and Physiology Part B. Vol. 136, pp: 723-730.
28
Siwicki, A.K. and Anderson, D.P., 1993. Nonspecific defense mechanisms assay in fish: II. Potential killing activity of neutrophils and macrophages, lysozyme activity in serum and organs and total immunoglobulin level in serum. Fish Disease Diagnosis and Prevention Methods Olsztyn, Poland. Vol. 10, pp: 5-12.
29
Tabak, L.A., 1995. In defense of the oral cavity: structure biosynthesis and function of salivary mucins. Annu. Rev. Physiol. Vol. 57, pp: 547-564.
30
Timalata, K.; Marimuthu, K.; Vengkades, R.; Xavier, R.; Rahman, MA. and Sreeramanan, S.,2015. Elucidation of innate immune components in the epidermal mucus of different freshwater fish species. Acta Ichthyol Piscatoria. Vol. 3, pp: 221-230.
31
Villarroel, F.; Bastías, A.; Casado, A.; Amthauer, R. and Concha, M.I., 2007. Apolipoprotein A-I, an antimicrobial protein in Oncorhynchus mykiss: evaluation of its expression in primary defence barriers and plasma levels in sick and healthy fish. Fish Shellfish Immunol. Vol. 23, pp: 197-209.
32
Whyte, S.K., 2007. The innate immune response of finfish e a review of current knowledge. Fish Shellfish Immunol. Vol. 23, pp: 1127-1151.
33
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی زیست شناسی تولیدمثلی ماهی شهری معمولی (Lethrinus nebulosus) در شمال غرب خلیج فارس (استان خوزستان)
ماهی Lethrinus nebulosus از خانواده شهری ماهیان Lethrinidae پراکنش وسیعی در آبهای سواحل ایران دارد. تعیین شاخصهای رسیدگی جنسی در مطالعات زیستشناسی، مدیریت صید و تکثیر و پرورش آبزیان اهمیت زیادی دارد. در این پژوهش، نمونهبرداری ماهانه از تیر ماه 1393 تا خرداد ماه 1394 از سواحل شمالغربی خلیج فارس در استان خوزستان انجام شد. پس از زیستسنجی و تعیین جنسیت، شاخصهای گنادوسوماتیک، هپاتوسوماتیک، طول 50 درصد بلوغ و نسبت جنسی ماهانه همچنین همآوری نسبی و مطلق این ماهی محاسبه شد. شاخص گنادوسوماتیک از بهمن افزایش یافته و اوج آن در فروردین ماه (1/7993) ثبت شد. وجود یک پیک در نمودار گنادوسوماتیک نشاندهنده یک بار تخمریزی در سال است. بیشترین مقدار تغییرات شاخص کبدی در ماهیان نر در اسفند ماه ( 0/7449) و ماهیان ماده، فروردین ماه (0/7812) بوده است. طول 50 درصد بالغین در جنس ماده 37/2 سانتیمتر محاسبه شد. همآوری مطلق 312415 و همآوری نسبی 8/24 تعیین گردید. تعداد مادهها در اکثر ماههای سال بیشتر از نرها بود. نسبت جنسی ماده به نر 1/99 به 1 بود. این ماهی در سواحل میانی خلیج فارس نسبت به شرق و غرب این سواحل در طول کمتری به بلوغ میرسد.
http://www.aejournal.ir/article_82496_518d8db64469a952994adb07d6c6241d.pdf
2018-09-23
271
278
Lethrinus nebulosus
تولیدمثل
شاخص گنادوسوماتیک
هم آوری
خوزستان
سیده زهرا
معصومی زاده
zmasoomi@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
منصوره
قائنی
mansoreh.ghaeni@gmail.com
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
AUTHOR
لاله
رومیانی
l.roomiani@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، واحد اهواز، دانشگاه آزاد اسلامی، اهواز، ایران
AUTHOR
اسدی، ه. و دهقانی، ر.، 1375. اطلس ماهیان خلیج فارس و دریای عمان، موسسه تحقیقات شیلات ایران، 226 صفحه.
1
حاجیعلیزاده، پ. و سورینژاد، ا.، 1392. بررسی رابطه طول-وزن شاخص وضعیت و عادات غذایی ماهی شهری گوش قرمز در آب های ساحلی استان هرمزگان. فصلنامه بومشناسی آبزیان. دوره 2، شماره 10، صفحات 1 تا 10.
2
درافشان،س.وابراهیمزاده،س.م.،1389.زیستشناسی تولیدمثل ماهی. نشر دانشگاه صنعتی اصفهان. 198 صفحه.
3
کاشی، م.ت. و هاشمی، ا.، 1388. چرخه تولیدمثلی، شاخص رسیدگی جنسی وطول بلوغ ماهی مید (Liza klunzingeri) در سواحل شرقی استان خوزستان (بحرکان). مجله بیولوژی دریا. دوره 1، شماره 2، صفحات 26 تا 36.
4
مجاز، ا.ا.؛ محمدیزاده، ف.؛ بحری، ا.ه. و کریمی، م.، 1391. بررسی رژیم غذایی ماهی شهری معمولیnebulosus Lethrinusدر خلیج فارس (آبهای جزیره ابوموسی). اولین همایش ملی شیلات و آبزیان ایران.
5
معصومیزاده، س.ز.، 1394. تعیین خصوصیات زیستی ماهی سارم دهان بزرگ (Scomberoides commersonnianus) در آبهای شمال غرب خلیج فارس (استان خوزستان). رساله دکتری، دانشکده علوم زیستی، دانشگاه شهید بهشتی. 116 صفحه.
6
معصومیزاده، س.ز.؛ پازوکی، ج. و ولینسب، ت.، 1396. بررسی شاخصهای تولیدمثلی سارم دهان بزرگ (Scomberoides commersonnianus) در شمالغرب خلیج فارس. فصلنامه محیط زیست جانوری. سال 9، شماره 4، صفحات 175 تا 183.
7
نیکولسکی. ج.و.، 1963. ترجمه جبارزادهشیاده، م.، 1386. اکولوژی ماهیان. انتشارات دانشگاه اسلامی واحد بندرعباس. 302 صفحه.
8
Abou-Seedo, F.S.; Dadzie, S. and Al-Kanaan, K.A., 2003. Sexuality, sex change and maturation patterns in the yellowfin seabream, Acanthopagrus latus (Teleostei: Sparidae) (Hottuyn, 1782). Journal of Applied Ichthyology. Vol. 19, pp: 65-73.
9
Almeida, P.R., 2003. Feeding ecology of Liza ramada (Risso, 1810) (Pisces, Mugilidae) in a south-western estuary of Portugal, Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 57, pp: 313-323.
10
Al-Sayes, A.; Al-Sedfy, H. and Al-Mulla, A., 1988. Some biological characters of Lethrinus nebulosus (Forskal) in the Arabian Gulf. Bulletin of the National Institute.
11
Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology South Asian Pub.PVt. Ltd.New Dehli. 157 p.
12
Ebisawa, A., 1990. Reproductive Biology of Lethrinus nebulosus (Pisces: Lethrinidae) Around the Okinawan Waters, Nippon Suisan Gakkaishi: Formerly Bull. Japan. Soc. Sci. Fish., DOI: 10.2331/suisan.56.19412.
13
Ferreri, R.; Basilone, G.; D’Elia, M.; Traina, A.; Saborido Rey, F. and Mazzola, S., 2009. Validation of macroscopic maturity stages according to microscopic istological examination for European anchovy. Marine Ecology. Vol. 30, No. 1, pp: 181-187.
14
Grandcourt, E.D.; Thabit, Z. and Al Shamsi, F.F., 2006. Biology and assessment of the painted sweetlips (Diagramma pictum (Thunberg, 1792)) and the spangled emperor (Lethrinus nebulosus (Forsskål, 1775)) in the southern Arabian Gulf Fish. Bull. Vol. 104, pp: 75-88.
15
Grandcourt, E.M.; Francis, F.; Al Shamsi, A.T.; Al Ali, K. and Al Ali, S., 2002. Stock assessment and biology of key species in the demersal fisheries of the Emirate of Abu Dhabi. Marine Environmental Research Centre, Environmental Research and Wildlife Development Agency, Project No. 02-23-0001.
16
Griffiths, S.; Fry, G. and van der Velde, T., 2005. Age growth and reproductive dynamics of the Talang queenfish (Scomberoides commersonnianus) in northern Australia. Final report to the National Oceans Office, CSIRO. 39 p.
17
Hajisamae, S.; Chou, L.M. and Ibrahim, S., 2003. Feeding habits and trophic organization of the fish community in shallow waters of an impacted tropical habitat. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 58, pp: 89-98.
18
Hoar, W.S.; Randal, D.Y. and Donaldson, E.M., 1983. Fish physiology. Academic Press. London.Vol. Lx, 477 p.
19
Juras, A.A. and Yamaguti, N., 1989. Sexual maturity, spawning and fecundity of king weakfish Macrodon ancylodon, caught oH Rio Grande do Sul State (southern coast of Brazil), Bolm Inst. oceanogr., S Paulo. Vol. 37, No. 1, pp: 51-58.
20
King, M., 1995. Fisheries biology, assessment and management. Fishing News Books, London, UK. 314 p.
21
King, M., 2007. Fisheries biology assessment and management fishing. Second Edition. Blackwell publishing Ltd. 382 P.
22
Kuo, C.L. and Lee, S.S., 1986. Age and growth of common porgy, Lethrinus nebulosus (Forsskål) in shelf waters off northwest Australia. Journal of the Fisheries Society of Taiwan. Vol. 3, pp: 39-57.
23
Mahmoud, H.H., 2009. Gonadal Maturation and Histological Observations of Epinephelus areolatus and Lethrinus nebulosus in Halaieb/Shalatien Area “Red Sea”, Egypt, Global Veterinaria. Vol. 3, No. 5, pp: 414-423.
24
Makeeva, A.P., 1992. Embriologia Rib, (Fish Embriology), Izdatelstvo Moskovskogo Universiteta, Moscow. pp: 35-37.
25
McIlwain, J.; Hermosa, G.V.; Claereboudt, M.; Al-Oufi, H.S. and Al-Awi, M., 2006. Spawning and reproductive patterns of six exploited finfish species from the Arabian Sea, Sultanate of Oman, J. Appl. Ichthyol. Vol. 2, pp: 167-176.
26
Mehanna, S.; Zaki, Sh.; Al-kiuymi, F.; Al-Kharusi, L. and Al-Bimani, S., 2012. Biology and fisheries management of spangled emperor Lethrinus nebulosus from the Arabian sea coast of Oman. INOC‐CNRS, International Conference on Land-Sea Interactions in the Coastal Zone. Jounieh LEBANON, 06‐08 November.
27
Moyle, P.B. and Cech, J.J., 1996. Fishes: An introduction to ichthyology. New Jersey: Prentice Hall. 590 p.
28
Murua, H.; Kraus, G.; Saborido-Rey, F.; Witthames, P.R.; Thorsen, A. and Junquera, S., 2003. Procedures to estimate fecundity of marine fish species in relation to their reproductive strategy, Journal Northw. Atl. Fish. Sci. Vol. 33, pp: 33-54.
29
Potts, G.W. and Wootton, R.J., 1989. Fish Reproduction. Strategies and Tactics. Academic Press.410 p.
30
Rahman, M.M.; Hossain, M.Y.; Ahamed, F.; Fatematuzzhura, S.B.R.; Abdallah, E.M.; Ohtomi, J. and Abd Allah, E.F., 2016. Fecundity of the Threatened Fish, Mystus vittatus (Siluriformes: Bagridae) in the Padma River, Bangladesh. Sains Malaysiana. Vol. 45, No. 6, pp: 899-907.
31
Rajaguru, A., 1992. Biology of two co-occurring tonguefishes, Cynoglossus arel and C. lida (Pleuronectiformes: Cynoglossidae), from Porto Nova, southeast coast of India. Fishery Bulletin. Vol. 90, pp: 328-367.
32
Randall, J.E., 1995. Coastal fishes of Oman, Univ. Hawaii Press, Honolulu, HI. 439 p.
33
Rathacharen, S.; Venkatasami, A. and Degambur, D., 1995. Growth parameters and rates of mortality Epinephelus fasciatus, Lethrinus nebulosus, Siganus sutor, Naso unicornis and Mugil cephalus from the coastal areas of Mauritius as estimated from analyses of length frequencies Albion Fisheries Research Centre. 12 p.
34
Sebastian, R., 2011. Biology of flat Toadfish, Colletteichthys dussumieri (Valenciennes, 1837) of Cochin Estuary, Department of Marine Biology Microbiology & Biochemistry Cochin University of Science and technology. 334 p.
35
Taghavi Motlagh, S.; Seyfabadi, J.; Vahabnezhad, H.; Ghodrati Shojaei, A. and Hakimelahi, Sh., 2010 a. Some Reproduction Characteristics and Weight-Length Relationships of the Spangled emperor, Lethrinus nebulous (Lethrinidae) of the South Coastal of Iran (Persian Gulf and Oman Sea). Turkish Journal of Fisheries and Aquatic
36
Sciences 10: 221-227, DOI: 10.4194/trjfas.2010.0210.
37
Taghavi Motlagh, S.; Seyfabadi, J.; Vahabnezhad, H.; Ghodrati Shojaei, A. and Hakimelahi, Sh., 2010 b. Growth, mortality and spawning season of the spangled emperor (Lethrinus nebulosus Forsskal, 1775) in coastal waters of Hormozgan Province in the Persian Gulf and Oman Sea, Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 9, No. 1, pp:161-172.
38
Townshend, T.J. and Wootton, R.J., 1984. Effect of food supply on the reproduction of the convict cichlid, Cichlasoma nigrofasciatum. J Fish Biol. Vol. 24, pp: 91-104.
39
Trippel, E.A., 1999. Estimation of stock reproductive potential: history and challenges for Canadian Atlantic gadoid stock assessments. J. Northw. Atl. Fish. Sci. Vol. 25, pp: 61-81.
40
Walker, M.H., 1975. Aspects of the biology of emperor fishes, family Lethrinidae north Queensland Barrier Reef waters. Ph.D. thesis, James Cook: University of Townsville, Australia.
41
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی مقایسه ای مورفولوژی، هیستوشیمی و هیستولوژی دستگاه گوارش ماهی شاه کولی دریای خزر (Alburnus chalcoides) در دوره لاروی، بچه ماهی و پیش بلوغ
ماهی شاه کولی از خانواده کپورماهیان است که مطالعه اندکی بر روی اندام های داخلی آن صورت گرفته است. با توجه به این که دستگاه گوارش بر روی رشد و بقای جانوران اهمیت دارد در این تحقیق به این مورد پرداخته شد. نمونه برداری از این ماهی از روز اول بعد از تخم گشایی تا پیش بلوغ در فواصل زمانی متفاوت به صورت تصادفی صورت گرفت. در واقع رشد این ماهی از طریق مطالعه مورفولوژیکی و مطالعه بافت شناسی به روش رنگ آمیزی هماتوکسیلین- ائوزین بررسی شد و ترشحات سلول های لایه مخاطی لوله گوارش از نظر کربوهیدراتی با استفاده از عملیات بافت شناسی به وسیله رنگ آمیزی اسید پریودیک شیف انجام شد. مطالعه آناتومیکی بر روی این ماهی نشان داد که دستگاه گوارش آن از دو بخش اصلی مری و روده تشکیل شده است. در روزهای اولیه دستگاه گوارش یک لوله ابتدایی و ساده بوده که فعالیت ترشحات مخاطی در آن دیده نشد. اما بعد از ظهور سلول های جامی شکل این فعالیت آغاز شد و لایه ای از ترکیبات پلی ساکارید خنثی بر روی لوله گوارش مشاهده شد. وجود ترشحات پلی ساکاریدی خنثی در مخاط لوله گوارش نشان داد که در هضم و جذب مواد غذایی نقش داشته و در محافظت لایه اپی تلیومی لوله گوارش و عبور مواد غذایی اهمیت دارد. ویژگی های تکاملی در این ماهی تا حدودی شبیه به سایر ماهیان خانواده کپورماهیان بوده اما تفاوت هایی نیز به صورت ویژه در آن دیده شد.
http://www.aejournal.ir/article_82508_554bcdd0f1d2a7f280b218d889d743c3.pdf
2018-09-23
279
288
ماهی شاه کولی
هیستوشیمی
مورفولوژی
هیستولوژی
مسرور
ذاکری نسب
m.zakeri_mzn@yahoo.com
1
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران، صندوق پستی: 775- 14515
AUTHOR
شهلا
جمیلی
shahlajamili45@yahoo.com
2
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، صندوق پستی: 6116- 14155
AUTHOR
علیرضا
ولی پور
valipour40@gmail.com
3
پژوهشکده آبزی پروری آب های داخلی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات و آموزش و ترویج کشاورزی، بندر انزلی، صندوق پستی: 66
LEAD_AUTHOR
سید محمدرضا
فاطمی
reza_fatemi@hotmail.com
4
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران، صندوق پستی: 775- 14515
AUTHOR
احسان
رمضانی فرد
eramezanifard@gmail.com
5
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه آزاد اسلامی، واحد علوم و تحقیقات، تهران، ایران، صندوق پستی: 775- 14515
AUTHOR
اسدی، ط. و قارزی، ا.، 1394. مطالعه بافت شناسی و هیستوشیمی لوله گوارشی ماهی زرده (Capoeta damascina). مجله پژوهش های جانوری (زیست شناسی ایران). جلد 28، شماره 4، صفحات 389 تا 398.
1
امیری پور، ل.؛ عبدی، ر.؛ موحدی نیا، ع. و صحرائیان، م.، 1394. مطالعه ساختار بافتی کبد و روده ماهی هامور معمولی (Epinephelus coioides) طی مراحل رشد و نمو لاروی. مجله اقیانوس شناسی. سال 6، شماره 23، صفحات 87 تا 92.
2
بانان خجسته، م.؛ ابراهیمی، س.؛ رمضانی، م. و حق نیا، ح.، 1388. مطالعه هیستولوژی، هیستوشیمیایی مری و روده ماهی کپورمعمولی (Cyprinus carpio). مجله زیست شناسی جانوری. سال 1، شماره 4، صفحات 17 تا 26.
3
بحرکاظمی، م.؛ مجازی امیری، ب.؛ پوستی، ا. و ویلکی، ا.، 1385. مطالعه شیمی بافتی لوله گوارش ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspius) از زمان تفریخ تا مرحله بچه ماهی یک تابستانه (Parr). نشریه منابع طبیعی. جلد 59، شماره 3، صفحات 639 تا 648.
4
تاکاشیما، ا. و هیبایا، ت.، 1995. اطلس بافت شناسی ماهی (اشکال طبیعی و آسیب شناسی). پوستی، ا. و صدیق مروستی، س.ع.، 1387. انتشارات دانشگاه تهران. تهران. 297 صفحه.
5
خوشنود، ز.؛ جمیلی، ش.؛ خدابنده، ص.؛ ماشینچیان مرادی، ع. و مطلبی، ع.، 1393. بررسی ساختار و فراساختار بافت آبششی و مکان یابی سلول های کلراید آبششی به روش ایمونوهیستوشیمی در بچه ماهی سفید دریای خزر Kamensky, 1901) Rutilus frisii kutum). مجله پژوهش های جانوری (زیست شناسی ایران). جلد 27، شماره 4، صفحات 498 تا 508.
6
خیاط زاده، ج.؛ خوش نگاه، ث.؛ فاطمی، ف.؛ سعادت فر، ز. و شاهسونی، د.، 1388. بررسی هیستولوژیک و هیستوشیمیایی لوله گوارش (روده و معده) ماهی قره برون (Acipenser persicus) در بازه زمانی 2 هفته پس از تخم گشایی (Hatching). مجله زیست شناسی دانشگاه آزاد اسلامی واحد گرمسار. دوره 1، شماره 4، صفحات 21 تا 31.
7
زهتاب ور، ا.؛ طوطیان، ز.؛ کرامت امیرکلایی، ع.؛ داودی پور، س. و شادی مزدقانی، م.، 1390. کالبدشناسی لوله گوارش کپور علفخوار (Ctenopharyngodon idella). نشریه دامپزشکی. شماره 93، صفحات 45 تا 51.
8
عمادی، ح.؛ عبدلی، ا. و حسن زاده کیابی، ب.، 1387. تنوع زیستی ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر. انتشارات علمی آبزیان. تهران، 237 صفحه.
9
یعقوبی، م.؛ مجازی امیری، ب.؛ نعمت اللهی، م. و یلقی، س.، 1393. بافت شناسی تکامل دستگاه گوارش لارو ماهی کلمه (Rutilus rutilus caspicus) دریای خزر. شیلات (مجله منابع طبیعی ایران). دوره 67، شماره 4، صفحات 625 تا 639.
10
Baglole, C.J. and Murray, H.M., 1997. Ontogeny of the digestive tract during larval development of Yellowtail flounder: a light microscopic and mucous histochemical study, Journal of fish biology. Vol. 51, pp: 120-134.
11
Bolasina, S.; Perez, A. and Yamashita, Y., 2006. Digestive enzymes activity during ontogenetic development and effect of starvation in Japanese flounder, Paralichthys olivaceus. Aquaculture. Vol. 252, pp: 503-515.
12
Boulhic, M. and Gabaudan, J., 1992. Histological study of the organogenesis of the digestive system and swim bladder of the over sole, (Solae solae Linnaeus, 1758). Aquaculture. Vol. 102, pp: 373-396.
13
Canan, B.H.; Nascimento, W.S.; Silva, N.B. and Chellappa, S., 2012. Morphohistology of the Digestive Tract of the Damsel Fish Stegastes fuscus (Osteichthyes: Pomacentridae). The Scientific World Journal. Vol 10, pp: 1-9.
14
Carrasson, M.; Grau, A.; Dopazo, L.R. and Crespo, S., 2006. A histological, histochemical and ultrastructural study of the digestive tract of dentex (Pisces Sparidae) Journal of Histology and Histopathology. Vol. 21, pp: 579-593.
15
Cinar, K. and Senol, N., 2006. Histological and histochemical characterization of the Mucosa of the digestive tract in flower fish (Pseudophoxinus antalyae). Anatomia histologia embryologia. Journal of Veterinary Medicine. Vol. 35, No. 3, pp: 147-151.
16
Clarke, A.J. and Witcomb, D.M., 1979. A study of the histology and morphology of the digestive tract of the common eel (Anguilla anguilla). Journal of fish biology. pp: 159-170.
17
Gisbert, E.; Piedrahita, R.H. and Conklin, D.E., 2004. Ontogenetic development of the digestive system in California halibut (Paralichthys californicus) with notes on feeding practices. Aquaculture. Vol. 232, pp: 455-470.
18
Gisbert, E.; Rodriguez, A.; Castello, F. and Williot, P., 1998. A histological study of the development of the digestive tract of Siberian sturgeon (Acipenser baeri) during early ontogeny. Aquaculture. Vol. 167, pp: 195-209.
19
Khadse, T. and Gadhikar, Y.A., 2017. Histological and ultrastructural study of intestine of Asiatic knife fish, Notopterus notopterus. International Journal of Fisheries and Aquatic Studies. Vol. 5, No. 1, pp: 18-22.
20
Ikpegbu, E.; Nlebedum, U.C.; Nnadozie, O. and Agbakwuru, I.O., 2012. Histological structures of the accessory glands of the digestive system in adult farmed African catfish (Clarias gariepinus B.). Journal of Agriculture and Veterinary Science. Vol. 1, No. 6, pp: 41-46.
21
Mortazavi tabrizi, S.A.; Mortazavi, P. and Pousti, I., 2015. Histomorphologic study on oscar fish (Astronotus ocellatus) intestine. International journal of biology, pharmacy and allied sciences. IJBPAS. Vol. 4, No. 2, pp: 739-750.
22
Pearse, A.G.E., 1985. Histochemistry, theoretical and applied. Analytic technology. Vol. 2, pp: 121-132.
23
Raji, A.R. and Norouzi, E., 2010. Histological and histochemical study on the alimentary canal in Walking catfish (Claris batrachus) and piranha (Serrasalmus nattereri). Iranian Journal of Veterinary Research, Shiraz University. Vol. 11, No. 3, pp: 255-261.
24
Ramezani-Fard, E.; Kamarudin, M.S.; Harmin, S.A.; Saad, C.R.; Abd Satar, M.K. and Daud, S.K., 2011. ntogenic development of the mouth and digestive tract in larval Malaysian mahseer, Tor tambroides Bleeker,1854. Applied Ichthyology. Vol. 27, pp: 920-927.
25
Sarasquete, M.C.; Polo, A. and Yufera, A., 1995. Histology and histochemistry of the development of the digestive system of larval gilthead seabream, (Sparus aurrata). Aquaculture. Vol. 130, pp: 79-92.
26
Silva, M.R.; Natali, M.R.M. and Hahn, N.S., 2012. Histology of the digestive tract of Satanoperca pappaterra (Osteichthyes, Cichlidae). Acta Scientiarum Biological Sciences. Vol. 34, No. 3, pp: 319-326.
27
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تجمع فلزات سنگین کروم و کبالت در بافت های آبشش، پوست و عضله ماهی شاه کولی Chalcalburnus Chalcoides
تحقیق حاضر ، در بهار 1392، بهمنظور تعیین غلظت فلزات سنگین کروم وکبالت در بافتهای آبشش، پوست و عضله ماهی شاه کولی صید شده از آبهای حوضه جنوبی دریای خزر (تالاب انزلی وشیرود) در استان گیلان و مازندران وصورت گرفت. بافتهای مورد نظر پس از انجام زیستسنجی، تفکیک شدند. بهمنظور سنجش میزان فلزات در بافتها از روش هضم شیمیایی توسط اسیدنیتریک استفاده گردید و غلظت فلزات توسط دستگاه جذب اتمی کوره تعیین گردید. میانگین غلظت فلزات (برحسب پی پی ام وزن خشک) با استانداردهای جهانی نظیر: استاندارد جهانی FAO، WHO و Stoskopf مقایسه شد. میانگین غلظت کروم در همه موارد بهجز در بافت عضله در هر دو استان و در قیاس با استاندارد WHO وStoskopf بالاتر از حد مجاز ثبت گردید. میزان تجمع کبالت در مقایسه با استاندارد جهانی FAO در تالاب انزلی بالاتر از حد مجاز جهانی بود. میانگین غلظت فلز کروم بین بافتهای عضله، پوست و آبشش در هر دو استان تفاوت معنیداری نشان داد (0/05>p). میانگین غلظت فلز کبالت بین بافتهای عضله، پوست و آبشش در هر دو استان تفاوت معنیداری را نشان نداد (0/05<p). میانگین غلظت فلزات کروم و کبالت در بافتهای مورد بررسی بین دو استان تفاوت معنی داری را نشان نداد (0/05<p).
http://www.aejournal.ir/article_82557_7e600930b24f649ae7b3e9a322dd0bc8.pdf
2018-09-23
289
296
تجمع فلزات سنگین
ماهی شاه کولی
دریای خزر
استان گیلان
مهنازسادات
صادقی
mahnaz_sadat_sadeghi@yahoo.com.au
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال، صندوق پستی: 181- 19735
LEAD_AUTHOR
مژگان
امتیازجو
m_emtiazjoo@iau-tnb.ac.ir
2
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال، صندوق پستی: 181- 19735
AUTHOR
آرزو
شهبازی
3
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه دانشگاه آزاد اسلامی واحد تهران شمال، صندوق پستی: 181- 19735
AUTHOR
اسماعیلیساری، ع.، 1381. آلایندهها، بهداشت و استاندارد در محیط زیست. انتشارات نقش مهر، چاپ اول، تهران. 767 صفحه.
1
سعیدی، ه.، 1391 .آلودگی فلزات سنگین در ماهی و آبهای جمعآوری شده سواحل گرگان دریای خزر. پایاننامه کارشناسی ارشد، دانشکده علوم و فنون دریایی، واحد تهران شمال، دانشگاه آزاد اسلامی. 90 صفحه.
2
صادقیراد، م.،1383. مقایسه تجمع فلزات سنگین (روی، مس، کادمیوم، سرب، چیوه) در بافت عضله و خاویار دو گونه تاسماهی ایرانی و ازونبرون حوضه جنوبی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. دوره 14، شماره 3، صفحات 79 تا 100.
3
عسکریساری، م.، 1383. بررسی و تعیین میزان فلزات سنگین (جیوه، کادمیوم، سرب، روی، کبالت) در ماهیان خوراکی تالاب انزلی. همایش بینالمللی خلیج فارس. 101 صفحه.
4
منصوری، ب.، 1389. تعیین میزان برخی فلزات سنگین در بافتهای مختلف سیاهماهی در قناتهای بخش مرکزی بیرجند. کارشناس ارشد محیط زیست.
5
Canli, M. and Atli, G., 2003. The Relationships Between Heavy Metal (Cd, Cr, Cu, Fe, Pb, Zn) Levels and The Size of Sixe Mediterranean Fish Species, Environmental Pollution. Vol. 121, No. 1, pp: 129-136.
6
Demirak, A.; Yilmaz, F.; Levent tuna, A. and Ozdemiy, N., 2006. Heavy metals in water sediment and tissues of Leucicuscephalus form a stream in south Western Trurky, chemosphere. Vol. 63, No. 9, pp: 1451-1458.
7
Ebrahimpour, M. and Porkhabbaz, A., 2011. Bioaccumulation of heavy metals in freshwater fishes, Anzali, Iran. Department of environmental sciences, Faculty of agriculture, University of Birjand. Vol. 87, pp: 386-392.
8
Fridtid, S.M. 2010. Trace Metal Contents in Fish Species from Pacific Ocean (Soth of Asia), Environmental Pollution Vol. 10, pp: 209-213.
9
Kalay, M.; Ay, O. and Canli, M., 1999. Heavy Metal Concentrations in fish tissues from the Northeast Mediterranean Sea. Bull. Environ. Contam. Toxicol. Vol. 63, pp: 673-681.
10
Karadede, H.; Oymak, S.A. and Unlu, E., 2004. Heavy metals in Mullet, Liza abu, and catfish, silurus triostogus, from the Ataturk Dumlake (Eupharates), Turkey. Environ Int. Vol. 30, No. 2, pp: 183-188.
11
Kazancheev, D., 1980. Exotic fish species in the fresh waters of Iran. Zoology in the Middle East. Vol. 40, No. 2, pp: 88-103.
12
Mesut, U., 2012. Determination of Metal (Cu, Zn, Se, Cr and Cd) levels in Tissues of the Cyprinid Fish, Capoeta trutta (Heckel, 1843)from Different regions of keban Dam lake (Euphrates-Turkey). Vol. 20, No. 8, pp: 2036-2040.
13
MOOPAM. 1999. Manual of Oceanographic Observation and Pollution Analyses Method.Third Edition. Regional Organization for The Marine Environment (Ropme). 450 P.
14
Pouarang, N.; Dennis, J.H., and Ghoorchian, H., 2005. Tissue distribution and redistribution of trace elemenets in shrimp species with the emphasis on the roles of metallothionein. Ecotoxicology. Vol. 13, No. 6, pp: 519-533.
15
PrabhuDassBatvari, B.; Kamala-Kannan, S.; Shanthi, K.; Krishnamoorthy, R.; Jae Lee, K. and Jayaprakash, M., 2008. Heavy metals in two fish species (Carangoidelmalabaricus and Belone stronglurus) from Pulicat Lake, North of Chennai, Southeast Coast of India. Environ. Monit. Assess. Vol. 145, pp:167-175.
16
Rashed, M.N., 2001. Monitoring of environmental heavy metals in fish from Bulletin. U.S. Vol. 90, pp: 328-367.
17
Sekar, C.K.; Chary, N.S.; Kamala, T.C.; Raj, D.S.S. and Rao, A.S., 2003. Fractionation studies and bioaccumulation of sedimentbound heavy metals in Kolleru Lake by edible fish. Environ. Int.Vol. 29, pp: 1001-1008.
18
Viarengo, A., 1989. Heavy metals in marine invertebrates: mechanisms of at the cellular level. Rev, Aquat.Sci. Vol. 1, pp: 295-317.
19
WHO. 1999. Toxic Cyanobacteria in Water. E and FN spon. 416 p.
20
Wong, C.K.; Wong, P.P.P.K. and Chu, L.M., 2001. Heavy metal concentrations in marine fishes collected from fish culture sites in Hong Kong. Arch. Environ. Contamin. Toxicol. Vol. 40, pp: 60-69.
21
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی تعداد باکتری Salmonella thyphi در گوشت چرخ شده ماهی کیلکای معمولی (Clupeonella cultriventris caspia) در فرم آزاد و نانوکپسوله گیاه رازیانه (Foeniculum vulgare) در دمای 4 سانتی گراد در زمان های مختلف نگه داری
گیاه رازیانه با نام علمی (Foeniculum Vulgare) از خانواده چتریان (Apiaceae) است. هدف از این مطالعه بررسی اثر ضدباکتریایی عصاره گیاه رازیانه دارای فرم نانوکپسوله بر باکتری Salmonella typhi و مقایسه تاثیرعصارهفرم آزادو فرمنانوکپسوله آن در مهار این باکتری و هم چنین دستیابی به بهترین ترکیب و غلظت عصاره گیاه رازیانه جهت پیشگیری و مهار رشد باکتری Salmonella typhi در گوشت چرخ شده ماهی کیلکای معمولی در دمای 4 درجه سانتی گراد بود. در این مطالعه عصاره الکلی آزاد و نانوکپسوله گیاه رازیانه در دو غلظت 0/5 و 1 درصد بر رفتار باکتری Salmonella thyphiدر گوشت چرخ شده ماهی کیلکا معمولی (Clupeonella cultriventris caspia) مورد ارزیابی قرار گرفت. پوشش مورد استفاده برای تولید نانوکپسوله صمغ عربی با نسبت 3 به 1 بود. رفتار Salmonella thyphi در روزهای 3، 6، 9 و 15 مورد ارزیابی قرار گرفت است. نتایج نشان داد با گذشت زمان فرم نانوکپسوله در غلظت 1% بهترین اثر مهارکنندگی را بر باکتری Salmonella thyphi داشت. با افزایش زمان نگه داری ماهی در شرایط دمای 4 درجه سانتی گراد، اثر ضد باکتریایی فرم نانوکپسوله بیش تر بوده و فرم آزاد ضعیف تر عمل کرده و به فرم شاهد نزدیک تر شده و تعداد باکتری در فرم آزاد با گذشت زمان روند صعودی داشت (0/05>p). پیشنهاد می گردد که از عصاره آزاد و نانوکپسوله رازیانه در غلظت 1% جهت کاهش بار باکتری های بیماری زای مولد فساد در سایر فرآورده های شیلاتی استفاده گردد که فرم نانوکپسوله آن تاثیر بیش تری در کاهش آن دارد.
http://www.aejournal.ir/article_82570_d8af96cc7e0b44f95308b02d45f9f839.pdf
2018-09-23
297
302
Clupeonella cultriventris caspia
گیاه رازیانه
Salmonella thyphi
اثر مهارکنندگی باکتری
ام لیلا
غزنوی
qaznavi@gmail.com
1
باشگاه پژوهشگران جوان و نخبگان، واحد لاهیجان، دانشگاه آزاد اسلامی، لاهیجان، ایران
LEAD_AUTHOR
اجاق، س.م.؛سحری،م.ع. و رضائی، م.،1383. اثر آنتی اکسیدان های طبیعی بر کیفیت ماهی کیلکای معمولی (Clupeonellacultriventris caspia) به هنگام نگهداری در یخ. مجله علوم و فنون دریایی ایران. سال 3، شماره 4، صفحات 1 تا 7.
1
چلبیان، ف.؛ نوروزی، ح. و موسوی، س.ا.، 1382. بررسی اثرات ضدمیکروبی اسانس هفت گونه گیاهی از تیرههای مختلف بر برخی از باکتری های بیماری زا. فصلنامه گیاهان دارویی. سال 7، صفحات 37 تا 41.
2
رحیمی، م.ک.، 1392. فشرده میکروبیولوژی پزشکی. نشر آییژ. 358 صفحه.
3
رضایی، م.؛ سحری،م.ع.؛ معینی،س.؛صفری،م.؛رضاییان،م. و غفاری،ف.، 1381. بررسی برخی خصوصیات کیفی چربی کیلکای آنچوی (Clupeonella engrauliformis) در زمان نگه داری به حالت انجماد. مجله علوم دریایی ایران. شماره 4، صفحات 55 تا 64.
4
زرگری، ع.، 1383. گیاهان دارویی (جلد 5). چاپ ششم، انتشارات دانشگاه تهران. 1010 صفحه.
5
شعبانپور، ب.؛ اصغرزاده کانی، ا.؛ حسینی، ه. و عباسی، م.، 1386. تغییرات کیفیت چربی سوریمی ماهی فیتوفاگ. مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی. شماره 15، صفحات 20 تا 28.
6
موسوی، م.ح.؛ آخوندزاده بستی، ا.؛ میثاقی، ع.؛ جباری خامنه، ح.؛ کریم، گ. و زهرایی صالحی، ت.، 1389. بررسی اثر اسانس گیاه آویشن شیرازی بر میزان رشد سالمونلا تیفیموریوم در سوپ جو تجاری. گیاهان دارویی. سال 9، دوره 2، صفحات 109 تا 116.
7
Al-Dagal, M.M.and Bazarra, W.A., 1999. Extension of shelf-life of whole and peeled shrimp with organic acid salts and bifidobacteria. Jour of Food Protect. Vol. 62, pp: 51-56.
8
Arora, D. and Kaur, J., 1999. Antimicrobial activity of spices. Intern J of Antimicrobial Agents. Vol. 12, pp: 257-262.
9
Aubourg, S.P.; Perez-Alonso, F. and Gallardo, J.M., 2005. Studies on rancidity inhibition in frozen horse mackerel by citric acid and ascorbic acids. European Journal of Lipid Science and Technology. Vol. 106, pp: 232-240.
10
Banergee, S., 2006. Inhibition of mackerel (Scomber scomberus) muscle lipoxygenase by green tea polyphenols. Food Res. Tech. Vol. 39, pp: 486-491.
11
Duraipandiyan, V.; Ayyanar, M. and Ignacimuthu,S., 2006. Antimicrobial activity of some ethnomedicinal plants used by Paliyar tribe from Tamil Nadu, India. BMC Comp. Alt. Med. Vol. 6, pp: 35-41.
12
Fan, W.; Sun, J.; Chen, Y.; Qiu, J.; Zhang, Y. and Chi, Y., 2009. Effects of chitosan coating on quality and shelf life of silver carp during frozen storage. Food Chemistry. Vol. 115, pp: 66-70.
13
Frangos, L.; Pyrgotou, N.; Giatrakou,V.; Ntzimani, A. and Savvaidis, I.N., 2010. Combined effects of salting, oregano oil and vacuum-packaging on the shelf-life of refrigerated trout fillets. Food Microbiology. Vol. 27, pp: 115-121.
14
Ghaly, A.E.; Dave, D.; Budge, S. and Brooks, M.S., 2010. Fish Spoilage Mechanisms and Preservation Techniques. Review. American Journal of Applied Sciences. Vol. 7, No. 7, pp: 859-877.
15
Gram, L. and Huss, H.H., 1996. Microbiological spoilage of fish and fish products. International Journal of Food Microbiology. Vol. 33, pp: 121-137.
16
Gram, L. and Dalgaard, P., 2002. Fish spoilage bacteria problems and solutions. Current Opinion in Biotechnology. Vol. 13, pp: 262-266.
17
Hamdy Roby, M.H.; Sarhana, M.A.; Selima, K.A.H. and Khalel, K.I., 2013. Evaluation of antioxidant activity, total phenols and phenolic compounds in thyme (Thymus vulgaris), sage (Salvia officinalis), and marjoram (Origanum majorana) extracts. Industrial Crops and Products.Vol. 43, pp: 827-831.
18
Hefnawy, Y.A.; Moustafa, I.S. and Marth, E.H., 1993. Sensitivity of Listeria monocytogenes to selected spices. Journal of Food Protection. Vol. 56, pp: 876-878.
19
Huss, H.H., 1995. Quality and quality changes in fresh fish. FAO fisheries technical paper N°. 348, Food and Agriculture Organization (FAO) of the United Nations, Rome, Italy.
20
Kumar, M. and Berwal, J.S., 1998. Sensitivity of food pathogens to cumin (Nigella sativum). J. Appl. Microbiol. Vol. 84, pp: 213-215.
21
McMeekin, T.A.; Olley, J.N.; Ross, T. and Ratkowsky, D.A., 1993. Predictive Microbiology. John Wiley & Sons Ltd. Chichester, UK.
22
Ojagh, S.M.; Rezaei, M.; Razavi, S.H. and Hosseini, S.M.H., 2010. Effect of chitosan coatings enriched with cinnamon oil on the quality of refrigerated rainbow trout. Food Chemistry. Vol. 120, pp: 193-198.
23
Oussalah, M.; Caillet, S.; Saucier, L. and Lacroix,M., 2007. Inhibitory effects of selected plant essential oils on the growth of four pathogenic bacteria: E. coli O157:H7, Salmonella typhimurium, Staphylococcus aureus and Listeria monocytogens. Food control. Vol. 18, pp: 414-20.
24
Ozogul, F., Polat, A. and Ozogul, Y., 2004. The effects of modified atmosphere packaging and vacuum packaging on chemical, sensory and microbiological changes of sardines (Sardina pilchardus). Food Chemistry, Vol. 85, pp: 267-273.
25
Ozyurt, G.; Kuley, E.; Ozkutuk, S. and Ozogul, F., 2009. Sensory, microbiological and chemical assessment of the freshness of red mullet (Mullus barbutus) and gold band goatfish (Upeneus moluccensis) during storage in ice. Food Chemistry. Vol. 114, pp: 505-510.
26
Shabnam, J.; Sobia, M.; Ibatsam, Kh. Rauf, A. and Saleem Haider, M., 2012. Comparative antimicrobial activity of clove and fennel essential oils against food borne pathogenic fungi and food spoilage bacteria. African Journal of Biotechnology. Vol. 11, No. 94, pp: 16065-16070.
27
Sallam, K.I., 2006. Antimicrobial and antioxidant effects of sodium acetate, sodium lactate, and sodium citrate in refrigerated sliced salmon. J food control. Vol. 18, pp: 566-575.
28
Sallam, K.I., 2007. Antimicrobial and antioxidant effects of sodium acetate, sodium lactate and sodium citrate in refrigerated sliced salmon. Food Control. Vol. 18, pp: 566-575.
29
Sánchez-Gonzalez, L.; Vargas, M.;Gonzalez-Martínez, C.; Chiralt, A. and Chafer, M., 2011. Use of essential oils in bioactive edible coatings. Food Engineering Reviews. Vol. 3, pp: 1-16.
30
Savvaidis, I.N.; Skandamis, P.N.; Riganakos, K.A.; Panagiotakis, N. and Kontominas, M.G., 2002. Control of natural microbial flora and Listeriamonocytogenes in vacuum packaged trout at 4 and 10°C using irradiation.Journal of Food Protect. Vol. 65, pp: 515-522.
31
Shirazinejad, A.R.; Noryati, I.; Rosma A. and Darah, I., 2010. Inhibitory effect of lactic acid and Nisin on bacterial and spoilage of chilled shrimp. World academy of science engineering and technology. Vol. 65, pp: 163-167.
32
Smolinske, S.C., 1992. Handbook of Food, Drug, and Cosmetic Excipients. CRC Press. 448 p.
33
Vehring, R., 2008. Pharmaceutical particle engineering via spray drying. Pharm. Res. Vol. 25, pp: 999-1022.
34
Wang, L.; Liu, L.; Holmes, J.; Kerry, J.F. and Kerry, J.P., 2007. Assessment of film-forming potential and properties of protein and polysaccharide-based biopolymer films. J. Food Sci. Technol. Vol. 42, pp: 1128-1138.
35
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی کارایی تولید بچه ماهی نورس تیلاپیا سیاه Oreochromis niloticus و هیبرید قرمز Oreochromis sp در دو سیستم نرسینگ
تأمین بچه ماهی یکی از نیازهای پایه برای توسعه آبزی پروری ماهی تیلاپیا است و لازم است بهینه سازی روش ها با هدف افزایش کارایی تولید بچه ماهی مورد توجه قرار گیرد. در مطالعه حاضر، تولید بچه ماهی تیلاپیا تک جنس گونه نیل سیاه Oreochromis niloticus و هیبرید قرمز Oreochromis sp با استفاده از سیستم تانک فاقد هاپا و هاپانت از آغاز مرحله بچه ماهی نورس بررسی شد. نتایج نشان دهنده تفاوت بیش تر دامنه اندازه طول و وزن بچه ماهیان در تانک های فاقد هاپا و بازماندگی بیش تر در سیستم دارای هاپا بود. میانگین های طول و وزن بچه ماهیان در سیستم فاقد هاپا بیش از سیستم هاپا بود و آزمون t این اختلاف را معنی دار نشان داد (0/05>p). خلوص تک جنس سازی در هردو سیستم 100 درصد بود. هم چنین در مجموع میانگین های طول کل، وزن بدن و بازماندگی بچه ماهیان تیلاپیای قرمز به طور معنی دار بیش از بچه ماهیان سیاه به دست آمد (0/05>p). استفاده از سیستم هاپا برای تولید بچه ماهی نورس تک جنس از نظر یک دست بودن اندازه بچه ماهیان و بازماندگی مناسب مطلوب است و سیستم تانک های فاقد هاپا منجر به تولید بچه ماهیان با اندازه طول کل و وزن بیش تر بدن می شود.
http://www.aejournal.ir/article_82634_3efc61c1e82213c91a2c17175befdd03.pdf
2018-09-23
303
308
تیلاپیا
بچه ماهی نورس
نرسینگ
هاپا
تانک
فرهاد
رجبی پور
farhadrajabipour@yahoo.com
1
مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، مرکز تحقیقات ملی آبزیان آب های شور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ایران. کیلومتر 100 جاده یزد-بافق، صندوق پستی: 159
LEAD_AUTHOR
نسرین
مشائی
nassrinmashaii@yahoo.com
2
مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، مرکز تحقیقات ملی آبزیان آب های شور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ایران. کیلومتر 100 جاده یزد-بافق، صندوق پستی: 159
AUTHOR
محمد
جعفری
m1372ja@gmail.com
3
مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، مرکز تحقیقات ملی آبزیان آب های شور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ایران. کیلومتر 100 جاده یزد-بافق، صندوق پستی: 159
AUTHOR
حبیب
سرسنگی
h.sarsangei@yahoo.com
4
مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، مرکز تحقیقات ملی آبزیان آب های شور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ایران. کیلومتر 100 جاده یزد-بافق، صندوق پستی: 159
AUTHOR
محمد
محمدی
mohamaditabasi@gmail.com
5
مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، مرکز تحقیقات ملی آبزیان آب های شور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ایران. کیلومتر 100 جاده یزد-بافق، صندوق پستی: 159
AUTHOR
علی
حاجی زاده
ahihajzadeh@yahoo.com
6
موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، صندوق پستی: 6116-14155
AUTHOR
بیطرف، ا.، 1391. گزارش نهایی پروژه، بررسی روش های تولید تک جنس نر تیلاپیای سیاه در شرایط آب لبشور بافق. مرکز تحقیقات ماهیان آبشور داخلی بافق. مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 55 صفحه.
1
رجبی پور، ف.، 1395. گزارش نهایی پروژه تحقیقاتی پایش شرایط بهداشتی و بررسی عوامل بیماری زای عفونی در کارگاه های تکثیر و پرورش تیلاپیا در بافق. مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 96 صفحه.
2
رجبیپور، ف.، 1394. گزارش نهایی پروژه پرورش تیلاپیا در سیستم آکواپونیک. سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، مرکز تحقیقات ملی آبزیان آب های شور. 44 صفحه.
3
رجبی پور، ف.، 1391. گزارش نهایی پروژه بررسی امکان معرفی تیلاپیا به صنعت تکثیر و پرورش آب های داخلی مناطق کویری ایران. ایستگاه تحقیقات ماهیان آبشور داخلی بافق. مؤسسه تحقیقات شیلات ایران. 96 صفحه.
4
سرسنگی، ح.، 1395. گزارش نهایی پروژه بررسی اثر دما، شوری، دوره نوری، تراکم و هم جنس خواری بر رشد و بازماندگی لارو تیلاپیا در آب لب شور بافق. مرکز تحقیقات ملی آبزیان آب های شور، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 41 صفحه.
5
سرسنگی،ح.،1391. گزارش نهایی پروژه مطالعه وضعیت سازگاری، رشد و بازماندگی تیلاپیا (Oreochromis sp) در شرایط پرورشی آب لب شور بافق. مرکز تحقیقات ماهیان آب شور داخلی بافق، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 46 صفحه.
6
علیزاده،م.،1391.ارزیابی زیست محیطی (EIA) پرورش ماهی تیلاپیا در بافق یزد. مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 130 صفحه.
7
محمدی، م.، 1391. گزارش نهایی پروژه تعیین مناسب ترین جیره غذایی برای پرورش تیلاپیای سیاه (Oreochromis niloticus) در آب لب شور بافق. مرکز تحقیقات ماهیان آب شور داخلی بافق، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 58 صفحه.
8
مشائی، ن.، 1395. گزارش نهایی پروژه تعیین اپتیممهای تکثیر (شوری، دوره نوری، تراکم، و نسبت جنسی مولدین) ماهیان تیلاپیای پرورشی سیاه درشرایط آب لبشور بافق. مرکزتحقیقات ماهیان آبشور داخلی بافق، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 31 صفحه.
9
مشائی، ن.، 1391. گزارش نهایی پروژه تعیین بیوتکنیک تکثیر و تولید بچه ماهیان نورس تیلاپیای پرورشی درشرایط آب لبشور بافق. مرکزتحقیقات ماهیان آبشور داخلی بافق، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. 57 صفحه.
10
Abdel-tawwab, M.; El-Marakby H.I. and Ahmad, M.H., 2006. Cannibalism in Oreochromis niloticus effect of stocking density, feed quality and submerged macrophytes. Indian Journal of Fisheries. Vol. 53, No. 3, pp: 245-251.
11
Bhujel, R.C., 2008. The role of Asian Institute of Technology on the promotion of tilapia for aquaculture, AIT. 8th International Symposium on Tilapia in Aquaculture, Egypt, Cairo.
12
Bhujel, R.C., 2014. A Manual for Tilapia Business Management. CABI Pub. 216 p.
13
Bhujel, R.C.; Little, D.C. and Hossain, A., 2007. Reproductive performance and the growth of pre-stunted and normal Nile tilapia (Oreochromis niloticus) broodfish at varying feeding rates. Aquaculture. Vol. 273, pp: 71-79.
14
Blashine-Earn, S. and Earn, D.J.D., 1998. On the evolutionary pathway of parental care in mouth-brooding cichlid fish. Proceedings of the Royal Society of London. Vol. 265, pp: 2217-2222.
15
Bocek, A., 1990. Net enclosure system for Oreochromis niloticus fingerling production. International Center for Aquaculture and Aquatic Environments. Auburn Univ. (USA).
16
Drummond, C.D.; Murgas, L.D.S. and Vicentini, B., 2009. Growth and survival of tilapia Oreochromis niloticus submitted to different temperatures during the process of sex reversal. Ciência e Agrotecnologia. Vol. 33, No. 3.
17
El-Sayed, A.M., 2002. Effects of stocking density and feeding levels on growth and feed efficiency of Nile tilapia fry. Aquaculture Research. Vol. 33, pp: 621-626.
18
El-Sayed, A.M., 2006. Tilapia culture. CABI Pub. 277 p.
19
Fessehaye, Y., 2006. Natural mating in Nile tilapia (Oreochromis niloticus L.) Implications for reproductive success, inbreeding and cannibalism. PhD thesis, Wageningen University, Netherlands. 149 p.
20
Guerrero, R.D. and Shelton, W.L., 1974. An aceto-carmine squash technique for sexing juvenile fishes. The Progressive Fish Culturist. Vol. 36, 56 p. (Cited in Wassermann and Afonso, 2003).
21
Hussain, M.G., 2004. Farming of Tilapia, Breeding Plans, Mass Seed Production and Aquaculture Techniques. Momin Offset Press, Dhaka, Bangladesh. 149 p.
22
Little, D.C. and Hulata, G., 2000. Strategies for tilapia seed production. In: Tilapias: Biology and Exploitation. Beveridge, M.C. M. and B.J. McAndrew, Editors. Kluwer Academic Publishers, London, UK. pp: 267-326.
23
Little, D.C., 1989. An evaluation of strategies for production of Nile tilapia (Oreochromis niloticus L.) fry suitable for hormonal treatment. PhD thesis, Institute of Aquaculture, University of Stirling, UK.
24
Macintosh, D.J. and Little, D.C., 1995. Nile tilapia (Oreochromis niloticus). In: Bromage, N.R. and Roberts, R.J. (eds) Broodstock Management and Egg and Larval Quality. Blackwell Science, Oxford, UK, pp: 277-320.
25
Muntaziana, M.P.A.; Rahim, A.A.; Harmin, S.A. and Amin, S.M.N., 2011. Effect of Broodfish Sex Ratio on Seed Production of Red Tilapia in Suspended Hapa. Journal of Fisheries & Aquatic Science. Vol. 6, No. 7, 862 p.
26
Nandlal, S. and Pickering, T., 2004. Tilapia fish farming in Pacific Island countries. Vol. 1-2. Copyright Secretariat of the Pacific Community and Marine Studies Program, The University of the South Pacific.
27
Nasr-Allah, A.M.; Dickson, M.W.; Al-Kenawy, D.A.R.; Ahmed, M.F.M and El-Naggar, G.O., 2014. Technical characteristics and economic performance of commercial tilapia hatcheries applying different management systems in Egypt. Aquaculture. Vol. 426-427, pp: 222-230.
28
Phelps, R.P. and Popma, T.J., 2000. Sex reversal of tilapia. Pages 34-59 in B.A. Costa-Pierce and J.E. Rakocy, eds. Tilapia Aquaculture in the Americas, Vol. 2. The World Aquaculture Society, Baton Rouge, Louisiana, United State.
29
Popma, T.J. and Lovshin, L.L., 1995. Worldwide Prospects for Commercial Production of Tilapia. International Center for Aquaculture and Aquatic Environments, Department of Fisheries and Allied Aquacultures, Auburn University, Alabama. 42 p.
30
Romana-Eguia, M.R.R. and Eguia, R.V., 1999. Growth of five Asian red tilapia strains in saline environments. Aquaculture. Vol. 173, pp: 161-170.
31
Suresh, A.V. and Lin, C.K., 1992. Tilapia culture in saline waters: a review. Aquaculture. Vol. 106, pp: 201-226.
32
Tilapia Aquaculture Dialogue (TAD). 2011. Better Management Practices for Tilapia Aquaculture: A tool to assist with compliance to the International Standards for Responsible Tilapia Aquaculture. WWF Pub. 54 p.
33
Wahby, O.M. and Shalaby, S.H., 2010. Oral administration of testosterone in fish diet affect sex differentiation and testis development in tilapia. Research Journal of Agriculture and Biological Sciences. Vol. 6, No. 6, pp: 946-952.
34
Watanabe, W.O.; Kuo, C.M. and Huang, M.C., 1984. Experimental rearing of Nile tilapia fry (Oreochromis niloticus) for Salt water culture. ICLARM Technical Reports. No. 14, 28 p.
35
ORIGINAL_ARTICLE
اثرات عصاره هیدروالکلی گزنه (Urtica dioica) بر بافتشناسی گناد و هورمونهای جنسی مولدین ماهی قرمز (Carassius auratus)
در این مطالعه اثر سطوح مختلف عصاره هیدروالکلی گیاه گزنه (Urtica dioica) بر بافتشناسی گناد و هورمونهای جنسی مولدین ماهی قرمز (Carassius auratus) مورد بررسی قرار گرفت. آزمایش در سه سطح 2، 4 و 8 گرم بر کیلوگرم عصاره گیاهی و گروه شاهد بهصورت کاملاً تصادفی انجام شد. ذخیرهسازی با تراکم 5 عدد ماهی با میانگین وزنی 4/70± 21/88 گرم در هر مخزن فایبرگلاس 500 لیتری بهمدت 8 هفته در شرایط یکسان انجام شد.پایش سطح استروئیدهای جنسی نشان داد که اختلاف معنی داری در سطح غلظت تستوسترون بین تیمارهای مختلف مشاهده نشد (0/05<P). اما در بررسی سطوح هورمون 17- آلفا هیدروکسی پروژسترون (نانوگرم بر میلیلیتر) در مولدین ماده تغذیه شده با عصاره گزنه در سطح 2 گرم در کیلوگرم غذا بیش تر از سایر تیمارها بود (0/05>P). هم چنین در بررسی نمو بافت اندام جنسی در تمامی تیمارها، هر دو جنس نر و ماده در مرحله 4 رسیدگی جنسی قرار داشتند. نتایج نشان می دهد که استفاده از عصاره گیاهی گزنه در سطح 2 گرم در کیلوگرم غذا می تواند بر توان تولیدمثلی ماهی اثرگذار باشد.
http://www.aejournal.ir/article_82635_28e8399d38b7fee0a7fee3174860fb8c.pdf
2018-09-23
309
314
ماهی قرمز
گزنه
استروئیدهای جنسی
گناد
تولیدمثل
شبنم
نژادمقدم
sh.n.moghadam88@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
LEAD_AUTHOR
محمدرضا
ایمانپور
mrimanpoor@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
ولی اله
جعفری
vjafari110@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
رقیه
صفری
fisheriessafari@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان
AUTHOR
قربانی رنجبری، ع.؛ قربانی رنجبری، ن.؛ قربانی رنجبری، ز. و قربانی رنجبری، س.، 1393. بررسی تاثیر عصاره هیدرواکسی گزنه بر تغییرات هورمون تسترون و اسپرماتوژتر در موش صحرایی. مجله تازه های بیوتکنولوژی سلولی مولکولی. شماره 14، صفحات 31 تا 39.
1
صفری، ر.؛ ایمانپور، م.ر. و شعبانپور، ب.، 1387. اثر مراحل رسیدگی جنسی روی ترکیب شیمیایی عضله ماهی سفید (Rutilus frisii kutum) در خلیج گرگان. مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی. دوره 16، شماره 1. صفحات 28 تا 34.
2
عبداللهمشایی، م.، 1388. فیزیولوژی ماهی در سیستمهای پرورش متراکم. انتشارات دریاسر. چاپ دوم. 302 صفحه.
3
Abbas, H.H. and Abbas, W.T., 2011. Assessment study on the use of pawpaw; (Carica papaya)seeds to control (Oreochromis niloticus) breeding. Pakistan Journal of Biological Sciences. Vol. 14, pp: 1117-1123.
4
Akinbowale, O.L.; Peng, H. and Barton, M.D., 2006. Antimicrobial resistance in bacteria isolated from aquaculture sources in Australia. Journal of Applied Microbiology. Vol. 100, pp: 1103-1113.
5
Arukwa, A. and Goksory, A., 2003. Egg shell and egg yolk proteins in fish, hepatic proteins for the next generation: Oogenetic, population and evolutionary, implication of endocrine disruption. Comparative Hepatology. Vol. 6, pp: 1-46.
6
Bapary, M.A.J. and Fainuulelei, P., 2009. Environmental control of gonadal development in the tropical damselfish. Marine Boilogy Research. Vol. 5, pp: 462-469.
7
Bucholtz, R.H.; Tomkiewicz, J. and Dalskov, J., 2008. Manual to determine gonadal maturity of herring (Clupea harengus). DTU Aqua-report. 197-08, Charlottenlund: National Institute of Aquatic Resources. 45 p.
8
Caballero, M.J.; Obach, A.; Rosenlund, G.; Montero, D.; Gisvold, M. and Izquierdo, M.S., 2002. Impact of different dietary lipid sources on growth, lipid digestibility, tissue fatty acid composition and histology of rainbow trout, (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 214, pp: 253-271.
9
Citarasu, T.; Sivaram, V.; Immanuel, G.; Rout, N. and Murugan, V., 2006. Influence of selected Indian immunostimulat herbs against white spot syndrome virus (wssv) infection in black tiger shrimp, with reference to haematological, biochemical and immunological changes. Fish and shellfish immunology. Vol. 21, pp: 372-384.
10
Dada, A.A. and Adeparusi, E.O., 2012. Dietary effects of two medicinal plants (Sesamum indicum) and (Croton zambesicus) on the reproductive indices in female African catfish (Clarias gariepinus) broodstock. Egyptian Journal of Aquatic Research. Vol. 38, pp: 269-273.
11
Dada, A.A. and Ebhodaghe, B.E., 2011. Effect of (Garcinia kola)seed meal on egg quality of the African catfish (Clarias gariepinus) (Burchell) broodstock. Cameroon Journal of Experimental Biology. Vol. 7, No.1, pp: 1-8.
12
FAO. 2014. Aquaculture Department 2014. The state of world fisheries and aquaculture. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome. 243 p.
13
Feldman, B.F.; Zinkl, J.G. and Jain, N.C., 2000. Schalms Veterinary Hematology. Lippincott Williams and Wilkins. pp: 1120-1124.
14
Figueiredo Fernandes, A.; Ferreira-Cadoso, J.V.; Garcia Santos, S.; Monteiro, S.M.; Carrola, J.; Matos, P. and Fontainhas Fernandes, A., 2007. Histopathological changes in liver and gill epithelium of Nile tilapia (Oreochromis niloticus), exposed to waterborne copper. Pesquisa Veterinaria Brasileria. Vol. 27, pp: 103-109.
15
Friendman, M. and Baron, D.L., 2001. Nutritional and health benefits of soy proteins. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 49, No. 3, pp: 1069-1086.
16
Genten, F.; Terwinghe, E. and Danguy, A., 2009. Atlas of fish histology. Science publisher. 215 p.
17
Guzman, J.M.; Norberg, B.; Ramos, J.; Mylonas, C.C. and Manano, E.L., 2008. Vitellogenin, steroid plasma levels and spawning performance of cultured female Senegalese sole. General & Comparative Endocrinology. Vol. 156, pp: 285-297.
18
Jegede, T., 2010. Control of reproduction in Oreochromis niloticus using Hibiscus rosa-sinensisleaf meal as reproduction inhibitor. Journal of Agricultural Science. Vol. 2, pp: 149-154.
19
Johnson, I.T.; Gee, J.M.; Price, K.; Curl, C. and Fenwick, G.R., 1986. Influence of saponins on gut permeability and active nutrient transport in vitro. Journal of Nutrition. pp: 2270-2277.
20
Lapina, N.N., 1978. Seasonal change in the biochemical composition of organs and tissues in (Rutilus rutilus)from the Mozhhaisk Reservior. Vopr. Ikhtiol. pp: 1099-1109.
21
Lee, W.K. and Yang, S.W., 2002. Relationship between ovarian development and serum levels of gonadal steroid hormones, and Induction of oocyte maturation and ovulation in the cultured female korean spotted sea bass (Lateolabrax maculatus). Aquaculture. Vol. 207, pp: 169-183.
22
Lourdes, R.F.; Jorge, R.E.; Scott, B.; Dea H.R. and Eliseo, T., 2008. Risks and benefits of commonly used herbal medicines in Mexico. Toxicology and Applied Pharmacology. Vol. 227, pp: 125-135.
23
Lucidiet, P.; Bemabo, N.; Turriani, M.; Mattioli, M. and Barboni, B., 2003. Cumulus steroido genesis is influenced by the degree of oocyte maturation. Reproductive Biology and Endocrinology. Vol. 1, pp: 45-55.
24
Miller, D.H. and Ankley, G.T., 2004. Modeling impacts on populations: fathead minnow exposure to the endocrine disruptor 17btrenbolone as a case study. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 59, pp: 1-9.
25
Nayak, S.K., 2010. Role of gastrointestinal microbiota in fish. Aquaculture Research. Vol. 41, pp: 1553-1573.
26
Opałka, M.; Kamińska, B.; Ciereszko R. and Dusza, L., 2004. Genistein affects testosterone secretion by Leydig cells in roosters (Gallus gallus domesticus). Reproductive Biology. Vol. 4, No. 2, pp:185-193.
27
Obaro, I.O.; Nzeh, C.G. and Oguntoye, S.O., 2012. Control of Reproduction in (Oreochromis Niloticus) Using Crude Extract of (Azadirachta Indica) Saponin. Advances in Environmental Biology. Vol. 6, No. 4, pp: 1353-1356.
28
Phelps, P.R. and Popma, J.T., 2000. Sex reversal of tilapia. In: Costa-pierce AB, Rakocy EK (eds) Tilapia aquaculture in the Americas.The World Aquaculture Society: Baton Rouge, Louisiana.Vol. 2,pp: 39-59.
29
Popesku, J.T.; Martyniuk, C.J.; Mennigen, J.; Xiong, H.; Zhang, D.; Xia, X.; Cossins, A.R. and Trudeau, V.L., 2008. The goldfish (Carassius auratus) as a model for neuroendocrine signalin. Molecular and Cellular Endocrinology. Vol. 293, pp: 43-56.
30
Raji, Y.; Morakinyo, A.O.; Oloyo, A.K.; Akinsomisoye, O.S.; Kunle-Alabi, O.T.; Esegbue-Peters, P.R.C. and Awobajo, F.O., 2005. Impact of the chloroform extract of (Carica papaya) seed on oesterous cycle and fertility in female albino rats. Journal of Medical Science. Vol. 5, No. 4, pp: 337-343.
31
Spano, L.; Tyler, C.R.; Aerle, R.V.; Devos, P.; Mandiki, S.N.M.; Silvestre, F.; Thome, J.P. and Kestemont, P., 2004. Effects of atrazine on sex steroid dynamics, plasma vitellogenin concentration and gonad development in adult Goldfish. Aquatic Toxicology. Vol. 6, pp: 369-379.
32
Srinath, K.; Sridhar, M.; Kartha, P.N.R. and Mohanan, A.N., 2000. Group farming for sustainable aquaculture. Ocean and coastal management. Vol. 43, pp: 557-571.
33
Zhang, L.; Khan, I.A. and Foran, C.M., 2002. Characterization of the estrogenic response to genistein in Japanese medaka (Oryzias latipes). Comparative Biochemistry and Physiology C. Vol. 132, pp: 203-211.
34
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه اثرات بی هوش کننده اسانس گل میخک در ماهیان آنجل (Pterophyllum scalare)، گوپی (Poecilia reticulate) و طلایی (Carassius auratus)
اسانس گل میخک از جمله بهترین داروهای بی هوشی است که به دلیل ویژگی های منحصر به فرد اخیراً در علوم شیلاتی به شدت مورد توجه قرار گرفته است. پژوهش حاضر با هدف تعیین حداقل غلظت بی هوش کننده این دارو در ماهی آنجل (Pterophyllum scalare)، ماهی گوپی (Poecilia reticulate) و ماهی طلایی (Carassius auratus) به عنوان گونه هایی با ارزش در صنعت ماهیان زینتی انجام گرفته است. تعداد 120 نمونه از هر گونه به چهار گروه 30 قطعه ای (هر گروه دارای 3 تکرار) تقسیم و در دمای 2±25 و 1±7=pH با غلظت های 50، 75، 100 و 150 قسمت در میلیون اسانس گل میخک بی هوش شدند. ماهیان برای بازگشت از بی هوشی به آکواریوم های فاقد ماده بی هوشی منتقل شدند. زمانهای از دست رفتن تعادل، بی هوشی، بازگشت تعادل و احیا کامل ماهیان بی هوش شده در هر گروه با دقت صدم ثانیه ثبت و مورد تجزیه و تحلیل آماری قرار گرفتند. نتایج نشان داد کم ترین غلظت مورد نیاز اسانس گل میخک جهت ایجاد بی هوشی در دو گونه آنجل و گوپی در مدت زمان کم تر از 3 دقیقه، غلظت 50 قسمت در میلیون بود که به ترتیب در زمان های 18/5±146/4 و 7/4±178/8 ماهیان را بی هوش کرد. در ماهی طلایی حداقل غلظت بی هوش کننده 75 قسمت در میلیون تعیین شد که در زمان 4/5±155/2 ثانیه ماهیان را بی هوش کرد. زمان بازگشت از بی هوشی در ماهیان آنجل، گوپی و طلایی کم تر از 5 دقیقه و به ترتیب 18/8±211/8، 7/4±208/7 و 4/6±191/2 بود. در فرآیند بازگشت از بی هوشی هیچ یک از گونه ها اختلالی مشاهده نشد.
http://www.aejournal.ir/article_82640_e08deb21fb264412841708ff93d98382.pdf
2018-09-23
315
322
بی هوشی
اسانس گل میخک
ماهی آنجل
ماهی گوپی
ماهی طلایی
علی
خسروانی زاده
akhosravanizadeh@gmail.com
1
گروه شیلات، پژوهشکده تالاب بین المللی هامون دانشگاه زابل، زابل، صندوق پستی: 538- 98615
LEAD_AUTHOR
ابطحی، ب.؛ شریف پور، ع.؛ آقاجانپور، م.؛ رسولی، ع.؛ فقیه زاده، س.؛ امیدبیگی، ر. و نظری، ر.م.، 1381. مقایسه LC50 اسانس گل میخک و MS222 در بچه ماهیان تاس ماهی ایرانی، قزل آلای رنگین کمان و کپور معمولی. مجله علمی شیلات ایران. شماره 11، صفحات 1 تا 12.
1
پاپهن، ا.؛ پیغان، ر. و مدرسی، ش.، 1384. بررسی تغییرات الکتروکاردیوگرافیک بی هوشی با کتامین در ماهی کپور علف خوار. مجله دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران. دوره 60، شماره 1، صفحات 59 تا 64.
2
تجری،م.؛ عظیمی،ع.؛ کلنگی میاندره،ح.؛ ایزی، ر. و شریفزاده، ع. 1391. اثر اسانس گل میخک بر بی هوشی ماهی گوپی ماده (Poecilia reticulata). فصلنامه زیست شناسی جانوری. سال 4، شماره 4، صفحات ٢١ تا 26.
3
زرگری، ع.، 1376. گیاهان دارویی. چاپ چهارم، انتشارات دانشگاه تهران. 413 صفحه.
4
سلطانی، م.؛ امیدبیگی، ر.؛ رضوانی، س.؛ مهرابی، م.ر. و چیت ساز، ح.، 1380. مطالعه اثرات هوشبری اسانس و عصاره گل میخک در ماهی قزل آلای رنگین کمان تحت برخی شرایط کیفی آب. مجله دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران. دوره 56، شماره 4، صفحات 89 تا 85.
5
سلطانی، م.؛ غفاری، م.؛ خضرائی نیا، پ. و بکایی، س.، 1383. مطالعه اثرات بی هوشی اسانس گل میخک هندی بر پارامترهای هماتولوژیک، برخی آنزیم های خون و آسیب شناسی بافت های مختلف ماهی کپورمعمولی. مجله دانشکده دامپزشکی دانشگاه تهران. دوره 59، شماره 3، صفحات 295 تا 299.
6
شریف پور، ع.؛ سلطانی، م.؛ عبدالحی، ح. و قیومی، ر.، 1381. اثر بی هوش کنندگی اسانس گل میخک (Eugenia caryophyllata) در شرایط مختلف pH و درجه حرارت در بچه ماهیان کپورمعمولی (Cyprinus carpio). مجله علمی شیلات ایران. شماره 4، صفحات 74 تا 59.
7
شریف روحانی، م.؛ حقیقی، م.؛ عصائیان، ح. و لشتوآقایی، غ.ر.، 1386. بررسی اثر بی هوشی اسانس آویشن شیرازی Zataria multiflora Boiss. (Labiatae بر ماهی آزاد دریای خزر (Salmo trutta caspius) و ماهی قزل آلای رنگین کمان پرورشی (Oncorhynchus mykiss). مجله علمی شیلات ایران. شماره 4، صفحات 106 تا 99.
8
محمدی ارانی، م.، 1385. بررسی اثر اسانس میخک (Eugenia caryophyllata) بر بی هوشی بچه تاس ماهی ایرانی (Acipenser persicus). فصلنامه تحقیقات گیاهان دارویی و معطر ایران. جلد 22، شماره 3، صفحات 162 تا 188.
9
میرحیدری، ح.، 1372. معارف گیاهی. جلد دوم، چاپ اول، تهران، دفتر نشر فرهنگ اسلامی. 510 صفحه.
10
Abdolazizi, S.; Ghaderi, E.; Naghdi, N. and Bahrami Kamangar, B., 2011. Effects of Clove Oil as an Anesthetic on Some Hematological Parameters of carassius auratus. J Aquac Res Development. Vol. 2, No. 1, pp: 1-3.
11
Caamano Tubio, R.I.; Weber, R.A. and Aldegunde, M., 2010. Home tank anesthesia: a very efficient method of attenuating handling stress in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum). J. Appl. Ichthyol. Vol. 26, pp: 116-117.
12
Chellapan, A.; Rajagopalsamy, C.B.T. and Jasmine, G.I., 2013. Effect of clove oil and benzocaine on the respiratory metabolism of angel fish Pterophyllum scalare. Indian Journal of Science and Technology. Vol. 6, No. 7, pp: 4853-4861.
13
Cotter, P.A. and Rodnick, K.J., 2006. Differential effects of anesthetics on electrical properties of the rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) heart. Comp. Biochem. Physiol. Vol. 145, pp: 158-165.
14
Cunha, L.; Geraldo, A.M.R.; Silva, V.C.; Cardoso, M.S.; Tamajusuku A.S.K. and Hoshiba, M.A., 2015. Clove oil as anesthetic for guppy. Bol. Inst. Pesca, São Paulo. Vol. 41, pp: 729-735.
15
Doleželová, P.; Mácová, S.; Plhalová, L.; Pištěková, V. and Svobodová Z., 2011. The acute toxicity of clove oil to fish Danio rerio and Poecilia reticulate.ACTA VET. BRNO. Vol. 80, pp: 305-308.
16
Feng, J. and Lipton, J.M., 1987. Eugenol: Antipyretic activity in Rabbits. Neuropharmacology. Vol. 26, No. 12, pp: 1775-1778.
17
Fujimoto, R.Y.; Pereira, D.M.; Silva, J.C.S.; de Oliveira, L.C.A.; Inoue, L.A.K.A.; Hamoy, M.; de Mello, V.J.; Torres, M.F. and Barbas L.A.L., 2017. Clove oil induces anaesthesia and blunts muscle contraction power in three Amazon fish species. Fish Physiol. Biochem. pp: 1-12.
18
Gholipourkanani, H.; Gholinasab-Omran, I.; Ebrahimi, P. and Jafaryan, H., 2015. Anesthetic Effect of clove oil loaded on lecithin based nano emulsions in gold fish, Carassius auratus. Journal of Fisheries and Aquatic Science. Vol. 10, No. 6, pp: 553-561.
19
Green, C.J., 1979. Animal Anaesthesia, Laboratory Animal Handbooks, No. 8, Laboratory Animals Ltd., London. 300 p.
20
Hikasa, Y.; Takase, K.; Ogasawara, T. and Ogasawara, S., 1986. Anaesthesia and recovery with tricane methanesul phonate, eugenol and thiopental sodium in the carp (Cyprinus carpio). Japanese Journal of Veterinary Science. Vol. 48, pp: 341-351.
21
Hilton, J.W. and Dixon, D.G., 1982. Effect of increased liver glycogen and liverweight on liver function in rainbow trout, Salmo gairdneri Richardson: recovery from anaesthesia and plasma 35 S-sulphobromopthalein clearance. J. Fish Dis. Vol. 5, No. 3, pp: 185-195.
22
Jayathilake, P.S.; De Silva, D.D.N. and Edirisinghe, U., 2003. Use of clove oil in sedating female wild guppy (Poecilia reticulata) for an extended period of time. Proceedings of the Peradeniya University Research Sessions. Vol. 8, pp: 194-207.
23
Karapmar, M., 1990. Inhibitory effects of anethole and eugenol on the growth and toxin production of Aspergillus parasiticus. International Journal of Food Microbiology. Vol. 10, pp: 193-200.
24
Kazun, K. and Siwicki, A.K., 2001. Propiscin a safe new anaesthetic for fish. Arch. Pol. Fish. Vol. 9, pp: 183-190.
25
Keene, J.L.; Noakes, D.L.G.; Moccia, R.D. and Soto, .G., 1998. The efficacy of clove oil as an anaesthetic for rainbow trout, Oncorhyncus mykiss (Walbaum). Aquacoulture. Res. Vol. 29, pp: 89-101.
26
Kikuchi, T.; Sekizawa, Y. and Ikeda, Y., 1974. Behavioural analyses of the central nervous system depressant activity of 2-amino-4-phenythiazole upon fishes. Bull. Jpn. Soc. Sci. Fish. Vol. 40, No. 4, pp: 325-337.
27
Kroon, F.J., 2015. The efficacy of clove oil for anaesthesia of eight species of Australian tropical freshwater teleosts. Limnology and Oceanography: Methods. Vol. 13, pp: 463-475.
28
Meinertz, J.R.; Greseth, S.L.; Schreier, T.M.; Bernardy, J.A. and Gingerich, W.H., 2006. Isoeugenol concentrations in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) skin-on fillet tissue after exposure to AQUI-S (™) at different temperatures, durations, and concentrations. Aquaculture. Vol. 254, pp: 347-354.
29
Millán-Ocampo, L.; Torres-Cortés, A.; Marín-Méndez, G.A.; Ramírez-Duart, W.; Vásquez-Piñeros, M.A. and Rondón-Barragán, I.S., 2012. Anesthetic concentration of eugenol in angelfish (Pterophyllum scalare). Rev Inv Vet Perú. Vol. 23, No. 2, pp: 171-181.
30
Mitjana, O.; Bonastre, C.; Insua, D.; Falceto, M.V.; Esteban, J.; Josa, A. and Espinosa, E., 2014. The efficacy and effect of repeated exposure to 2-phenoxyethanol, clove oil and tricaine methanesulphonate as anesthetic agents on juvenile Angelfish (Pterophyllum scalare). Aquaculture. Vol. 433, pp: 491-495.
31
Moleyar, V. and Narasimham P., 1992. Antibacterial activity of essential oil components. International Journal of Food Microbiology. Vol. 16, pp: 337-342.
32
Munday, P.L. and Wilson, S.K., 1997. Comparative efficacy of clove oil and other chemicals in anaesthetization of pomacentrus amboinesnsis, a coral reef fish. Journal of Fish Biology. Vol. 51, pp: 931-938.
33
Perdikaris, C.; Nathanailides, C.; Gouva, E.; Gabriel, U.U.; Bitchava, K.; Athanasopoulou, F.; Paschou, A. and Paschos, I., 2010. Size-relative Effectiveness of Clove Oil as an Anaesthetic for Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum, 1792) and Goldfish (Carassius auratus Linnaeus, 1758).ACTA VET. BRNO. Vol. 79, pp: 481-490.
34
Rajakumar, D.V. and Rao, M.N.A., 1993. Dehydrozingerone and isoeugenol as inhibitors of lipid peroxidation and as free radical scavengers. Biochemical Pharmacology. Vol. 46, pp: 2067-2072.
35
Ross, L.G. and Ross, B., 2008.Anaesthesia and Sedation of Aquatic Animals. Third Edition. Wiley-Blackwell. 340 p.
36
Siddiqui, Y.M., 1996. Effect of essential oils on the enveloped viruses: antiviral activity of oregano and clove oils on herpes simplex virus type I and Newcastle disease virus. Med. Sci. Res. Vol. 24, pp: 185-186.
37
Siwicki, A., 1984. New anaesthetic for fish. Aquaculture. Vol. 38, pp: 171-176.
38
Stoelting, R.K. and Miller, R.D., 1994. Basics of anaesthesia, 3rd edition, Churchill livingstone. pp: 67-72.
39
Tarkhani, R.; Imani, A.; Jamali, H. and Ghafari Farsani, H., 2017. Anaesthetic efficacy of eugenol on various size classes of angelfish (Pterophyllum scalare Schultze, 1823). Aquaculture Research. Vol. 48, No. 10, pp: 1-8.
40
Velisek, J. and Svobodova, Z., 2004. Anaesthesia of Rainbow Trout (Oncorhynchus mykiss) with 2-phenoxyethanol: Acute Toxicity and Biochemical Blood Profile. ACTA VET. BRNO.Vol.73, pp: 379-384.
41
Wicker, P., 1993. Local anaesthesia in the operating theatre. Nurs-times. Vol. 90, pp: 34-35.
42
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی رژیم غذایی ماهی سیچلاید ایرانی Iranocichla hormuzensis در رودخانه کُل استان هرمزگان
این مطالعه بهمنظور بررسی رژیم غذایی ماهی سیچلاید ایرانی (Iranocichla hormuzensis) در رودخانه کل استان هرمزگان بهمدت 12 ماه از بهمن ماه 1393 تا دی ماه 1394 انجام شده است . نمونهبرداری با تورهای پرتابی (سالیک) و تور انتظاری انجام شد. جهت بررسی رژیم غذایی، 360 نمونه از گونه (I. hormuzensis) انتخاب و میزان شاخص طول نسبی روده (RLG)، شاخص تهی بودن معده (CV)، شاخص ترجیح غذایی (FP) و درصد فراوانی اقلام غذایی محاسبه شدند. نتایج حاصل از بررسی شاخص طول نسبی روده در این گونه مشخص شد که بهطور میانگین این شاخص 1/41±9/29 بود که گیاهخوار بودن این آبزی را بازگو مینماید. میزان شاخص ضریب چاقی (CF)، 1/77±0/17 بهدست آمد که نشان میدهد این ماهی در رودخانه کل دارای وضعیت زیستی خوب و مناسبی است. میزان شاخص تهی بودن معده (CV)، برای این گونه در طول تحقیق 12/12% بهدست آمد که نشان میدهد این ماهی در زمره ماهیان پرخور میباشند. نتایج حاصل از شاخص ترجیح غذایی نشان داد که دیاتومهها بهعنوان غذای اصلی و اقلام غذایی شامل جلبکها ی سبزآبی، دیتریتوس، ماهیها و سختپوستان بهعنوان غذای فرعی و نرمتنان، حشرات و فرامینیفرا بهعنوان غذای تصادفی، در رژیم غذایی این ماهی بودند.
http://www.aejournal.ir/article_82691_1838a248a1454dd9579551fc24944995.pdf
2018-09-23
323
330
غذایی
رودخانه کل (استان هرمزگان)
سیچلاید ایرانی (I. hormuzensis)
ضریب تهی بودن معده
طول نسبی روده
بلال
خوشبخت
khoshbakht_balal@yahoo.com
1
دانشگاه پیام نور واحد بین الملل قشم، ایران، صندوق پستی: 18414-79561
LEAD_AUTHOR
سهیلا
ابراهیمی
s_ebrahimi@pnu.ac.ir
2
دانشگاه پیام نور واحد بین الملل قشم، ایران، صندوق پستی: 18414-79561
AUTHOR
محسن
صفائی
msn_safaie@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی و جوی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، صندوق پستی: 3995
AUTHOR
عیسی
کمالی
kamalyeassa@gmail.com
4
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، بندرعباس، صندوق پستی: 1597- 79145
AUTHOR
بندام، ح.، 1362. مطالعات شناسایی منابع آب و خاک حوضه آبریز رودخانه کل. اداره آب و فاضلاب منطقه استان هرمزگان. جلد 8، 300 صفحه.
1
حجتانصاریکماچالی، ط.، 1378. مطالعه غذا، عادات غذایی و تعیین سن ماهی سیکلید هرمزی (Iranocichla hormuzensis) از سوف ماهیشکلان در شهر شیراز. دانشگاه شیراز، پایاننامه کارشناسی ارشد زیستشناسی- بیوسیستماتیک جانوری. 175 صفحه.
2
سراجی، ف.، 1379. تراکم و تنوع جمعیت پلانکتونی در مناطق شرقی، مرکزی و غربی بندرعباس. مجله علمی شیلات ایران. شماره 4، صفحات 15 تا 26.
3
سراجی، ف.؛ دهقانی، ر. و زرشناس، غ.، 1373، بررسی رژیم غذایی ماهی حلوا سفید (Pampus aragenteus) در صیدگاههای عمده استان هرمزگان. مرکز تحقیقاتی دریای عمان. 47 صفحه.
4
Agbabiaka, L.A., 2012. Food a feeding habits of Tillapia zilli (Pisces: Cichlidae) in River Otamiri Suth- Eastern Nigeria. Bioscience Discovery. Vol. 3, No. 2, pp: 146-148.
5
AL Hussainy, A.H., 1949. On the functional morphology on the alimentary track of some fishes in relation to difference in their feeding habits. Quart. J. Mieor. Sci. Vol. 9, pp:190-240.
6
Ammundsen, P.A.; Gabler, H.M. and Staldvik, F.G., 1996. A new approach to graphical analysis of feeding strategy from stomach content data modification of the Costello method. Journal of Fish Biology. Vol. 48, pp: 607-614.
7
Biswass, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology. South Asian Publishers, PVT LTd, New Delhi. 157 p.
8
Coad, B.W., 2006. Endemicity in the freshwater fishes of Iran. Iranian J of Animal Biosystematics. Vol. 1, No. 1, pp:1-13.
9
Coad, B.W., 1982. A new genus and species of cichlid endemic to southern Iran. Copeia. Vol.1, pp: 28-37.
10
Dadzie, F.; Abou- Seedo, F. and Al-Qatton, E., 2002. The food and feeding habits of the silver pomfert, Pampus argentus, (Eupharsen) in Kuwait waters. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 16, pp: 61-67.
11
Dorner, H.; Berg, S.; Jacobsen, L.; Hulsmann, S.; Brojerg, M. and Wagner, A., 2003. The feeding behavior of large perch Perca fluviatilis L. in relation to food availability: A comparative study. Hydrobiologia. Vol. 506-509, pp: 427-434.
12
Esmaeili, H.R.; Ganjali, Z. and Monsefi, M., 2009. Reproductive biology of the endemic Iranian cichlid, Iranocichla hormuzensis Coad, 1982, from Mehran River, southern Iran. Environmental Biology of Fishes. Vol. 84, 141 p.
13
Euzen, E., 1987. Food habits and diet composition of some fish of Kuwait. Blletin Science. Vol. 9, pp: 65-86.
14
Hannon, B. and Joiris, C., 1989. A seasonal analysis of the southern north sea ecosystem. Ecology. Vol. 70, pp: 1916-1934.
15
Hyslop, E.J., 1980 Stomach contents analysis. Areview of methods and their application. J. fish Bio. Vol. 17, pp: 411-429.
16
Khadem, M., 1999. Diet determintion of rashgu (Leuteronema teradactylum) in Khuzestan zone. 20 M.s. thesis of marine biology. 95 p.
17
Karimzadeh, G.; Gabrielyan, B. and Fazli, H., 2010. Population dynamics and biological characteristics of kilka species (Pisces: Clupeidae) in the southeastern coast of the Caspian Sea. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 9, No. 3, PP: 422-433.
18
Lagler, K.F.; Bardach, J.E. and Miller, R.R., 1962. Ichthyology. Library of congress catalog number: 62-17463 printed in U.S.A. 545 P.
19
Luczkovich, J.J.; Borgatti, S.P.; Johnson, J.C. and Everett, M.G., 2003. Defining and Measuring Trophic Role Similarity in Food Webs Using Regular Coloration, Journal of Theoretical Biology. Vol. 220, pp: 303-321.
20
Newell, G.C. and Newell, R.C., 2006. Marine plankton: a practical guide. Hutchinson, London. 244 p.
21
Nikolsky, G.V., 1999. Ecology of fishes. Allied Science Publisher. 352 p.
22
Shalloof, K.A.S. and Khalifa, N., 2009. Stomach Contents and Feeding Habits of Oreochromis niloticus(L.) From Abu-abal Lakes, Egypt.World Applied Sciences Journal. Vol. 6, No. 1, pp: 01-05.
23
Todd, C.D. and Laverack, M.S., 1991. Coasal marine zooplankton: A practicl manual for student. Comridge Univ. Press, Cambridge. 106 p.
24
Ugwumba, O.A., 1988. Food and feeding habits of juveniles of some cultured species in Nigeria. Technical Paper. Vol. 31, pp: 1-20.
25
Venu, S. and Kurup, M., 2001. Observations on the biology of some fishes collected from 250-750m along the EEZ of india. Journal of fish biology. Vol. 66, No. 2, pp: 122-134.
26
ORIGINAL_ARTICLE
اثر عصاره اتانولی گیاه خارخاسک (Terrestis tribulus) روی فاکتورهای رشد و تولیدمثل درمولد و لارو ماهی دم شمشیری (Xiphophorus helleri)
در تحقیق حاضر اثر سطوح مختلف عصاره اتانولی گیاه خارخاسک(Terrestis tribulus) روی عملکرد تولیدمثلی و برخی فاکتورهای رشد در ماهی دمشمشیری و همچنین روی رشد و بقاء در فرزندان نسل اول این ماهیان مورد بررسی قرار گرفت. ماهیان مولد با جیره حاوی سطوح مختلف عصاره گیاه خارخاسک، ۰ (شاهد یا تیمار ۱)، 750 (تیمار ۲)، 1000 (تیمار ۳) و 1250 (تیمار ۴) میلیگرم بر کیلوگرم جیره غذایی به مدت 2 ماه تغذیه شدند. در پایان آزمایش نتایج نشان داد که اضافه کردن 750 میلیگرم عصاره گیاه خارخاسک باعث افزایش معنیداری در وزن نهایی، طول نهایی، شاخص افزایش وزن بدن، درصد افزایش وزن بدن و نرخ رشد ویژه درمقایسه با تیمارشاهد بود (0/05>P). بیش ترین میزان همآوری نسبی در تیمار ۲ مشاهده شد. شاخص گنادوسوماتیک نیز در تیمار 2 بیشترین مقدار را نشان داد. نتایج هم چنین نشان داد که بالاترین میزان لارو به مولد ماده در تیمار 2 دیده شد (0/05>P). درصد بقا در لاروها معنی دار نبودند و بیش ترین وزن نهایی و طول نهایی لاروها در تیمار 2 و کم ترین آن در تیمار 1 مشاهده گردید. در مجموع نتایج نشان داد که استفاده از غلظت 750 میلیگرم بر کیلوگرم گیاه خارخاسک در جیره مولدین ماهی ماده دم شمشیری میتواند باعث بهبود شاخصهای رشد و عملکرد تولیدمثلی در مولد و هم چنین لاروها شود.
http://www.aejournal.ir/article_82744_cb5c0c2eab3b6c264ad9023e669f0a8d.pdf
2018-09-23
331
338
گیاه خارخاسک
دم شمشیری
فاکتورهای رشد و بقاء
تولید مثل
شادی
زمانی
sh.zaman1972@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
محمد
سوداگر
sudagar_m@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
شهرام
دادگر
shdadgar@yahoo.com
3
سازمان تحقیقات آموزش وترویج کشاورزی، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، تهران، ایران
AUTHOR
حسین
آدینه
adineh.h@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی، گنبد گاووس، ایران
AUTHOR
عباسعلی
حاجی بگلو
alihajibeglou@gmail.com
5
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
حاجی بگلو، ع.، 1393. تاثیر ریزپوشانی و استفاده از عصاره اتانولی کورکوروس الیتوریوس و فیکوس بنگهالنسیس بر عملکرد تولیدمثلی و شاخص های رشد در ماهی دم شمشیری (Xiphophorus helleri). پایان نامه دکتری. دانشگاه کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. صفحات 10 تا 138.
1
حاجی بگلو، ع.؛ سوداگر، م.؛ حسینی، س،ع. و جعفری، س،م.، 1393. بررسی اثر سطوح مختلف عصاره اتانولیCorchorus olitorius برروی برخی فاکتورهای تولیدمثلی و رشد در ماهی دم شمشیری (Xiphophorus helleri). فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری. سال 6، شماره 4، صفحات: 47 تا 56.
2
حسنزاده، ا.؛ رضازاده، ش.؛ شمسا، ف.؛ دولت آبادی، ر. و زرین قلم، ج.، 1389. مروری بر خواص درمانی و فیتوشیمیایی شنبلیله (Fenu greek). فصلنامه گیاهان دارویی. سال 9، دوره 2، صفحات 2 تا 3.
3
رضائی، آ.؛ روزبه، م.؛ گورانی نژاد، س.؛ نجف زاده ورزی، ح.؛ فاطمی طباطبایی، س.ر. و پورمهدی بروجنی، م.، 1392. مطالعه اثرات حمایتی عصاره آبی-الکلی خارخاسک و ویتامین C بر تغییرات ناشی از سیکلوفسفامید در تخمدان رت. فیزیولوژی و فارماکولوژی، سال 2، شماره 17، صفحات 194 تا 203.
4
روزبهانی، ش. و نظری، ع.، 1394. تاثیر عصاره اتانولی رازیانه (Foenicolum vulgar) بر رشد و باروری ماهی گوپی (Pocilia reticulate). نشریه توسعه آبزی پروری. سال 9، شماره 3، صفحات 30 تا 35.
5
سجادی، م.؛ طاهری کندر، ا.؛ سوری نژاد، ا.؛ دریایی، ع.؛ میرزاده، ق. و خادمی، ف.، 1392. تاثیر افزودن مکمل ان-کارنیتین به جیره غذایی بر شاخص های رشد و بازماندگی ماهی صبیتی Sparidentexhasta. دوره 3، شماره 3، صفحات 37 تا 39.
6
ناجی، ط.؛ شهروزی فر، پ. و حسین زاده، ه.، 1393. مقایسه اثرات فیتواستروژن تخم گیاه شنبلیله (Trigonella foenum-graecum L) و 17 بتا استرادیول بر بافت تخمدان و کبد ماهی نابالغ گورامی سه خال. مجله پژوهش های بالینی دامپزشکی، دوره 5، شماره 2، صفحات 125 تا 134.
7
Chong, A.S.C.; Ishak, S.D. and Osman, Z.R., 2004. Effect of dietary protein level on the reproductive performance of female swordtails Xiphophorus helleri (Poeciliidae). Aquaculture. Vol. 234, pp: 381-392.
8
Citarasu, T.; Michael-Babu, M.; Raja-JeyaSekar, R. and Peter-Marian, M., 2002. Developing Artemia enriched Herbal diet for producing quality larvae in Penaeus monodon, Fabricius.AsianFish.Sci.Vol. 15, 32 p.
9
Conrad, J.; Dinchev, D.; Klaiber, I.; Mika, S.; Kostova, I. and Kraus, W., 2004. A novel furostanol saponin from Tribulus terrestris of Bulgarian origin. Fitoterapia. Vol. 75, pp: 117-122.
10
Dahlgren, B.T., 1980. The effects of three different dietary protein levels on the fecundity in the guppy, Poecilia reticulate (Peters). Journal of Fish Biology. Vol. 16, pp: 83-97.
11
Ebisch, I.M.; Thomas, C.M.; Peters, W.H.; Braat, D.D. and Steegers-Theunissen, R.P., 2007. The importance of folate, zinc and antioxidants in the pathogenesis and subfertility. Journal Human Reproduction Up date. Vol. 13, No. 2, pp:163-174.
12
Ghosh, S.; Sinha, A. and Sahu, C., 2007. Effect of probiotic on reproductive performance in female livebearing ornamental fish. Aquaculture Research. Vol. 38, pp: 518-526.
13
Htun-Han, C., 1979. The reproduction biology of the Dab Limnda limnda in the North Sea. Gonadosomatic index, Hepato somatic index and condition factor. Journal of Fish Biology. Vol. 1, pp: 369-378.
14
Jain A.; Katewa, S.S.; Chaudhary, B.L. and Galav,P., 2004. Folk herbal medicine used in birth control and sexual diseases by tribals of southern Rajasthan, India. J Ethnopharmacology. Vol. 90, pp: 171-177.
15
Kalamegam, K. and Ganesan, A.P., 2008. The hormonal effects of Tribulus terrestris and its role in the management of male erectile dysfunction an evaluation using primates, rabbit and rat. Phytomedicine. Vol. 15, 54 p.
16
Panjeshahin, M.; Dehghani, F.; Tahei, T. and Panahi, Z., 2005. The effects of hydroalcholic extract of Actinidia chinesis sperm count and motility and on the blood levels of estradiol and testosterone in male rats. Archives of Iranian Medicine. Vol. 8, No. 3, pp: 211-216.
17
Pokharkar, R.D.; Saraswat, R.K. and Kotkar, S., 2010. Survey of plants having antifertility activity from Western Ghat area of Maharashtra state. Journal of Herbal Medicine and Toxicology. Vol. 4, No. 2, pp: 71-75.
18
Poorfarid, M.; Karimi Jashni, H. and Houshmand, F., 2013. The effects of Aloe Vera sap on progesterone, estrogen and gonadotropin in female rats. Journal of Jahrom University of Medical Sciences. Vol. 10, No. 4, pp: 6-10.
19
Rao, Y.V.; Das, B.K.; Pradhan, J. and Chakrabarti, R., 2006. Effect of Achyranthes aspera on the immunity and survival of Labeo rohita infected with Aeromonas hydrophila. Fish Shellfish Immunol. Vol. 20, pp: 263-273.
20
Sivaram, V.; Babu, M.M.; Immanuel, G.; Murugadass, S.; Citarasu, T. and Marian, M.P., 2004. Growth and immune response of juvenile greasy groupers (Epinephelus tauvina) fed with herbal antibacterial active principle supplemented diets against Vibrio harveyi infections. Aquaculture. Vol. 227,pp: 2-9.
21
Telefo, P.B.; Moundipa, P.F. and Tchouanguep, F.M., 2004. Inductive effect of the leaf mixture extract of Aloe buettneri, Justicia insularis, Dicliptera verticillata and Hibiscus macranthus on in vitro production of estradiol. J Ethno Pharmacol. Vol. 91, No. 2-3, pp: 225-2230.
22
Wang, J.Q.; LIU, G.Z.; Tian, Z.X.; Li, W.K. and Yan, Y.L., 2008. Effects of Chinese herb medicine supplementation on reproduction of yellow catfish Pelteobagrus fulvidraco. Journal of Dalian Fisheries University. Vol. 2, pp: 174-185.
23
Wu, W.; Ye, J.; Lu, Q.; Wu, H. and Pan, Q., 1998. Studies on Gynostemma pentaphyllum used as fish feed additives. J Shanghai Fish Univ. Vol. 7, pp: 367-370.
24
Yan, W., Ohtani, K., Kasai, R. and Yamasaki, K. 1996. Steradial saponins from fruits of Tribulus terrestris.
25
Zheleva-dimitrova, D.; Obreshkova, D. and Nedialkov, P., 2012. Antioxidant activity of tribulus terrestris a natural Product in infertility therapy. Vol. 4, No. 4, pp: 1488- 1490.
26
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی زیستشناسی تولیدمثلی سیاه ماهی (1861 Capoeta gracilis (Keyserling, در رودخانه زاو پارک ملی گلستان
جهت مطالعه ویژگی های زیستی سیاه ماهی C. gracilis تعداد 171 قطعه ماهی به وسیله دستگاه الکتروشوکر از دی ماه 1394 تا خرداد ماه 1395 صید گردید. نسبت جنسی نر به ماده در جمعیت مورد مطالعه 1 : 1/67 بود که نشان دهنده اختلاف معنیداری بین نسبت جنسی نر و ماده در جمعیت فوق بود (p<0/05 ، 10/81=χ2). بیشینه طول کل و وزن ماده ها 199 میلی متر و 122/43 گرم و برای نرها 191 میلیمتر و 93/37 گرم ثبت گردید. نتایج نشان داد که الگوی رشد از نوع آلومتریک مثبت در ماده ها و آلومتریک منفی در گروه نرها و در گروه جمعیت الگوی رشد ایزومتریک بود ( 2/09 =tPopulation=2/09، 2/77 =tfemale، t-est, tmale ). میانگین همآوری مطلق و همآوری نسبی (تخم به ازای هر کیلوگرم وزن بدن) بترتیب برابر با 18062/40 و 1341/42 محاسبه شد. میانگین قطر تخمک ها 0/44 میلیمتر و از 0/10 تا 0/98 میلی متر متغییر بود. بالاترین میانگین شاخص گنادوسوماتیک برای جنس ماده در ماه فروردین و برای جنس نر در ماه خرداد مشاهده گردید که برای مادها و نرها به ترتیب 4/75 و 7/51 به دست آمد.
http://www.aejournal.ir/article_82761_e69e79d0607cc23c0de49b7437e99c02.pdf
2018-09-23
339
348
C. gracilis
سیاه ماهی
تولیدمثل
رودخانه زاو
پارک ملی گلستان
آرزو
کر
arezoo.kor20@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران، صندوق پستی: 163
AUTHOR
رحمان
پاتیمار
rpatimar@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران، صندوق پستی: 163
LEAD_AUTHOR
محمد
هرسیج
m_harsij80@yahoo.com
3
گروه شیلات، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران، صندوق پستی: 163
AUTHOR
ارسلان
بهلکه
arsalan.bahalkeh@yahoo.com
4
گروه شیلات، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران، صندوق پستی: 163
AUTHOR
امینی نسب، م.، 1379. ارزیابی اکولوژیکی نهر مادرسو، پارک ملی گلستان. پایان نامه کارشناسی ارشد. 214 صفحه.
1
اکبری پسند، ا.، 1376. مطالعه اکولوژیک ماهیان در رودخانه گرگانرود. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه تربیت مدرس. 66 صفحه.
2
پاتیمار، ر.؛ حبیبی، ص. و جعفری، ف.، 1390. بررسی پارامترهای رشد پوزانک خزری Alosacaspia caspia (Eichwald,1838 در سواحل جنوبی دریای خزر. نشریه شیلات، مجله منابع طبیعی ایران. دوره 64، شماره 1، صفحات 15 تا 27.
3
حاجی رادکوچک، ع.، 1395. بررسی پارامترهای رشد ماهی کاراس Carasius gibelio در چهار آبگیر استان گلستان- شمال ایران. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه گنبدکاووس. 102 صفحه.
4
دهداردرگاهی، م. و مخدوم، م.، ١٣٨١. زون بندی پارک ملی گلستان. مجلة محیط شناسی. دوره 29، صفحات 71 تا 77.
5
رضایی، م.؛ کمالی، ا.؛ حسن زاده کیابی، ب. و شعبانی، ع.، 1386. مطالعه بررسی سن، رشد، تولیدمثل سیاه ماهی Capoeta capoeta gracilis در نهر مادرسو، پارک ملی گلستان. مجله علمی شیلات ایران. دوره 16، شماره 2، صفحات 63 تا 73.
6
شامخی رنجبر، خ.، 1390. مقایسه درون حوضه ای ویژگی های تولیدمثلی سیاه ماهی (Capoeta capoeta gracilis) در 5 سرشاخه از حوضه اصلی گرگانرود (نهرهای زرین گل، تیل آباد، چهل چای، دوغ و پیشکمر). پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه گنبدکاووس. 74 صفحه.
7
صیادبورانی، م.، غنیزاده، د. 1383. ارزیابی ذخایر سیاه ماهی در سدماکو. مجله علمی شیلات ایران. دوره 3، صفحات 115 تا 127.
8
عبدلی، ا.، 1378. ماهیان آب های داخلی ایران. موزه طبیعت و حیات وحش ایران. 377 صفحه.
9
عبدلی، ا. و کوهستان اسکندری، س.، 1378 (الف). تولیدمثل طبیعی سیاه ماهی. مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. دوره 3، صفحات 31 تا 51.
10
عبدلی، ا.؛ حسن زاده کیابی ، ب.؛ حاجی مرادلو، ع.؛کمالی، ا.؛ رحمانی، ح. و میردار، ج.، 1378 (ب). طرح مطالعه لیمنولوژیک رودخانه گرگانرود. دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان.
11
عبدلی، ا. و نادری، م.، 1387. تنوع زیستی ماهیان حوضه جنوبی دریای خزر. انتشارات علمی آبزیان. 242 صفحه.
12
قلی زاده، م.؛ قربانی، ر.؛ سلمان ماهینی، ع.؛ حاجی مرادلو، ع.؛ رحمانی، ح. و ملایی، م.، 1388. بررسی ریخت سنجی، سن و رشد سیاه ماهی Capoeta capoeta gracilis در نهر زرین گل. مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی. جلد 16، صفحات 1 تا 11.
13
کوهستان اسکندری، س.، 1377.مطالعه برخی خصوصیات زیست شناسی، بوم شناسی و انگل شناسی سیاه ماهی در نهر مادرسو، پارک ملی گلستان. پایان نامه کارشناسی ارشد، تربیت مدرس. 120 صفحه.
14
میکاییلی، ع.؛ میرکریمی، ح. و یزداد داد، ح.، 1380. پارک ملی گلستان قبل و بعد از سیل مرداد 1380، بایدها و نبایدها. کار گروه محیط زیست. مجموعه مقالات تخصصی معاونت پژوهشی دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. همایش بررسی سیل در استان گلستان، سازمان حفاظت محیط زیست. صفحات 42 تا 49.
15
Abdoli, A.; Rasooli, P. and Mostafavi, H., 2008. LengthWeight relationships of Capoeta capoeta gracilis in the Gorganroud River south Caspian Bacin. Journal of Applid Ichthyology. Vol. 24, No. 1, pp: 96-98.
16
Bagenal, T. and Tesch, F., 1978. Methods for Assessment of Fish Production in Fresh Waters. IBP Handbook 3 Blackwell, Oxford. pp: 101-136.
17
Burrough, R.J. and Kennedy, C.R., 1979. The occurrence and natural alleviation of stunting in a population of roach, Rutilus rutilus. Journal of Fish Biology. Vol. 15, pp: 93-109.
18
Biswas, S.P., 1993. Manual of methods in fish biology. Asian Publishers. Pvt.Ltd. 157 p.
19
Beverton, R.J.H., 1992. Patterns of reproductive strategy parameters in some marine teleost fishes. Journal of Fish Biology. Vol. 41, pp: 137-160.
20
Darvish Sefat, A., 2006. Atlas of protected areas of Iran. Department of the Environment, Iran. 157 p.
21
Froese, R. and Binohlan, C., 2000. Empirical relationships to estimate asymptotic length, length at first and length at maximum yield per recruit in fishes, with a simple method to evaluate length frequency data. Journal of Fish Biology. Vol. 56, pp: 758:773.
22
Patimar, R.; Hajili Davaji, A.J. and Jorjani, A., 2011. Life History of Lenkron Capoeta capoeta gracilis in the Atrak River, Northern Iran. J of Life Sciences. Vol. 5, pp: 257-264.
23
Patimar, R.; Ownagh, E.; Jafari, N. and Hoseini, M., 2009. Intrabasin variation in allometry ents of Lenkoran Capoeta capoeta gracilis in the Gorganroud basin southeast Caspian Sea Iran. Journal of Applid Ichthyology. Vol. 25, pp: 776-778.
24
Pauly, D. and Munro, J.L., 1984. Once more on the comparison of growth in fish and vertebrates. ICLARM Fishbyte. Vol. 2, No. 1, 21 p.
25
Pauly, D., 1984. Fish population dynamics in tropical waters. A manual for use with programmable calculators. ICLARM studies and reviews (Manila). Vol. 8, pp: 1-325.
26
Przybylski, M., 1996. Variation in fish growth characteristics along a river course. Hydrobiologia. Vol. 325, pp: 39-46.
27
Sparre, P. and Venema, S.G., 1992. Introduction to tropical fish stock assessment part 1. FAO Fisheries Technical Paper No. 306.1, Rev. 2. Rome, FAO. 407 p.
28
Turkmen, M.; Erdogan, O.; Yeldirim, A. and Akyurt, I., 2001. Reproduction tactics, age and growth of Capoeta capoeta umbla Heckle 1843 from the Akkale region of the Karasu River, Turkey. Fisheries Research. Vol. 1220, pp: 1-12.
29
Zivkov, M., 1996. Critique of proportional hypotheses and methods for back calculation of fish growth. Environmental Biology of Fishes. Vol. 46, pp: 309-320.
30
Vollestad, L.A. and L'Bee-Lund, J.H., 1990. Geographic variation in life-history strategy of female roach Rutilus rutilus (L.). Journal of Fish Biology. Vol. 37, pp: 853-864.
31
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی برخی پارامترهای رشد ماهی Oxynoemacheilus argyrogramma (1874 Heckel,) در رودخانه گاماسیاب استان همدان
ماهی Oxynoemacheilus argyrogramm یک گونه بومی غرب ایران میباشد که اطلاعات بیولوژیکی اندکی در مورد این گونه وجود دارد. در این تحقیق الگوهای رشد و ساختار سنی گونهO. argyrogramma در رودخانه گاماسیاب همدان از اسفند 89 تا خرداد 90 طی 4 ماه نمونهبرداری مورد بررسی قرار گرفت. در مجموع از 317 عدد ماهی صید شده 147 عدد نر و134 عدد ماده بودند که اختلاف معنیداری بین جنس نر و ماده وجود نداشت (0/05<P) و نسبت جنسی آنها 1:1/09 بهدست آمد. دامنه تغیرات طولی و وزنی در جمعیت بهترتیب از7/6-2/7 سانتیمتر و 3/331-0/181 گرم و حداکثر فراوانی در گروه طولی 5/7-4/2 سانتیمتر مشاهده گردید. تعیین سن از روی سرپوش آبششی نشان داد که جمعیت مورد مطالعه دارای 4 گروه سنی +0 تا +3 است. رابطه طول-وزن برای نرها 3/007TL0/008=W، برای مادهها 3/177TL0/006=W و برای جمعیت 3/088TL0/007=W بود که الگوی رشد در نرها ایزومتریک و در مادهها و جمعیت از نوع آلومتریک مثبت بود. معادله فان برتلانفی برای جمعیت ماده ((2/71+t)0/158-exp-1)10/81=Lt و برای جنس نر(2/46+t)0/176-exp-1)10 /91=Lt به دست آمد. اطلاعات ارائه شده را میتوان در مدیریت گونه و تنوع زیستی مورد استفاده قرار داد.
http://www.aejournal.ir/article_82816_a5abf41fbe52b2e7f0fafa7642861778.pdf
2018-09-23
349
356
O. argyrogramma
الگوی رشد
ترکیب سنی
رودخانه گاماسیاب همدان
آلتین
قجقی
altin.ghojoghi@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران، صندوق پستی: 163
LEAD_AUTHOR
شقایق
عسگردون
sh_asgardun1449@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران، صندوق پستی: 163
AUTHOR
رحمان
پاتیمار
rpatimar@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشگاه گنبدکاووس، گنبدکاووس، ایران، صندوق پستی: 163
AUTHOR
هاشم
نوفرستی
hnowferesti@yahoo.com
4
باشگاه پژوهشگران جوان بوشهر، واحد دانشگاه آزاد اسلامی بوشهر، بوشهر، ایران
AUTHOR
پاتیمار، ر. و عبدلی، ا.، 1388. تنوع گونهای ماهیان رودخانه زرین گل (البرز شرقی- استان گلستان). مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی. دوره 16، شماره 2، صفحات 72 تا 81.
1
عباسی، ک.؛ نیکسرشت، ک. و نوروزی، ه.ا.، 1388. شناسایی و بررسی جمعیت ماهیان تالابهای آق گل، پیرسلمان و مناطق تالابی رودخانههای گاماسیاب و خرم آباد استان همدان. مجله علمی-تخصصی تالاب. سال 1، شماره 1، صفحات 71 تا 90.
2
عبدلی، ا.، 1378. ماهیان آبهای داخلی ایران. انتشارات موزه طبیعت و حیات وحش ایران. 68 صفحه.
3
سازمان شیلات ایران. 1381. مطالعات برنامهریزی توسعه منطقهای شیلات در آبهای داخلی در منطقه زاگرس میانی. جلد 3، بخش1: منابع آبهای سطحی تهران. 296 صفحه.
4
شریفینیا، م.؛ قربانی، ر.؛ حاجیمرادلو، ع. و آزرمدل، ح.، 1394. بررسی الگوی رشد سگ ماهی جویباری Paracobitis hircanica در رودخانه گرمابدشت، استان گلستان. مجله پژوهشهای ماهی شناسی کاربردی. دوره 3، شماره 1، صفحات 39 تا 52.
5
شیخ، م.، 1392. مطالعه فونستیک ماهی جنس Cobitis در حوزه خزر جنوبی. پایاننامه کارشناسیارشد. دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبدکاووس. 62 صفحه.
6
گلزاریانپور، ک.، 1388. مطالعه سیستماتیک گونههای جنس Nemacheilus در حوضه دجله براساس صفات مورفومتریک و مریستیک. پایاننامه کارشناسیارشد. دانشکده علوم زیستی، دانشگاه شهید بهشتی. 144 صفحه.
7
Bagenal, T., 1978. Methods for Assesment of fish production in freshwater. Third edition. Blackwell scientific publication Oxford. London Edinburgh Melbourne. 365 p.
8
Beverton, R.J.H. and Holt, S.J., 1956. A review of methods for estimating mortality rates in fish populations, with special reference to sources of bias in catch sampling. Rapp. P.v. Iteun. Cons. Int. Explor. Mer. Vol. 140, pp: 67-83.
9
Biwas, S.P., 1993. Manul of Methods in fish biology. South Asian Publishers Pvt Ltd., New Delhi, India.157 p.
10
Coad, B.W., 1987. Zoogeography of the freshwater fishesof Iran. In: Proceedings of the Symposium on the Fauna and Zoogeography of the Middle East, Mainz. pp: 213-228.
11
Coad, B.W. and Nalbant, T.T., 2005. A new genus and a new species of a remarkable Nemacheilid fish from Iran (Pisces: Ostariophysi: Nemacheilidae). Travaux du Muséum National d’Histoire Naturelle Grigore Antipa. Vol. 48, pp: 303-308.
12
Erdogan, O., 2002. Studies on the age, growth and reproduction characteristics of the chub, Leuciscus cephalus orientalis (Nodman. 1840) in Karasu River. Turkey. Turk journal of Vet Animal Science. Vol. 26, pp: 983-991.
13
Esmaeili, H.R. and Ebrahimi, M., 2006. Length-weight relationships of some freshwater fishes of Iran. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 22, pp: 328-329.
14
Esmaeili, H.R.; Coad, B.W.; Gholamifard, A.; Nazari, N. and Teimory, A., 2010. Annotated checklist of the freshwater fishes of Iran. Zoosystematica Rossica. Vol. 19, pp: 361-386.
15
Golzarianpour, K.; Abdoli, A. and Freyhof, J., 2011. Oxynoemacheilus kiabii, a new loach from Karkheh river drainage, Iran (Teleostei: Nemacheilidae). Ichthyological Explorations of Freshwaters. Vol. 22, No. 3, pp: 201-208.
16
Golzarianpour, K.; Abdoli, A. and Kiabi, B.H., 2011. Length-weight relationships for nine nemacheilian loaches (Teleostei: Nemacheilidae) from Iran. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 27, pp: 1411-1412.
17
Gonzalez Acosta, A.F.; De La Cruz Aguero, G. and De La Cruz Aguero, J., 2004. Length-weight relationships of fish species caught in a mangrove swamp in the Gulf of California (Mexico). Journal of Applied Ichthyology. Vol. 20, No. 2, pp: 154-155.
18
Heydarnejad, M.S., 2009. Length-weight relationships for six fresh water fish species in Iran. Chinese Journal of Oceanology and Limnology. Vol. 27, pp: 61-62.
19
Jamali, H.; Patimar, R.; Farhadi, M.; Golzarianpour, K. and Daraei, V., 2014. Some aspects of Turcinoemacheilus hafezi (Teleostei: Nemacheilidae) from Beshar River, southwestern Iran. Iranian Journal of Ichthyology. Vol. 1, pp: 32-38.
20
Jamali, H.; Patimar, R.; Farhadi, M.; Doost, A. and Daraei, V., 2014. Length-Weight relationships for five nemacheilian loaches (Teleostei: Nemacheilidae) from Iran. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 31, pp: 244-245.
21
Jamali, H.; Hassanpour-Fattahi, A.; Abdollahi, D.; Patimar, R. and keivany, Y., 2015. Some biological characteristics of Sefidrud loach, Oxynomacheilus bergianus (Teleostei: Nemacheilidae), in Aras River, northwestern Caspian Sea basin. Iranian Journal of Ichthyology. Vol. 2, No. 1, pp: 13-19.
22
Jamali, H.; Patimar, R.; Farhadi, M. and Daraei, V., 2016. Age, growth and reproduction of Paracobits malapterura from Qom River, Iran. Iranian Journal of Ichthyology. Vol. 3, No. 1, pp: 43-52.
23
Kottelat, M., 1990. Indochinese nemachilines: a revision of nemacheiline loaches (Pisces, Cypriniformes) of Thailand, Burma, Laos, Cambodia and southern Vietnam., Verlag Dr. Friedrich Pfeil, München. 262 p.
24
Lagler, K.F.; Bardach, J.E. and Miller, R.R., 1962. Ichthyology. Library of congress catalog cord number: 62-17463 printed in U.S.A. 545 p.
25
Mafakhei, P.; Eagderi, S., Farahmand, H. and Mosavii sabet, H., 2015. Descriptive osteology of Oxynoemacheilus kermanshahensis (Bănărescu and Nalbant, 1966) (Cypriniformes, Nemacheilidae). Croation journal of Fisheries. Vol. 73, pp: 115-123.
26
Nalbant, T.T. and Bianco, P.G., 1998. The loaches of Iran and adjacent regions with description of six new species (Cobitoidea). Italian Journal of Zoology. Vol. 65, pp: 109-123.
27
Nikolski, G.V., 1969. Theory of fish population dynamics as the biological background for rational explotation and management of fishery resources. Oliver and Boyd, Edinburgh. 323 p.
28
Patimar, R.; Adineh, H. and Mahdavi, M.J., 2009. Life history of the Western Crested Loach Paracobits malapterura in the Zarin-Gol River, East of the Elburz mountains (Northen Iran). Journal of Biologia. Vol. 64, No. 2, pp: 350-355.
29
Patimar, R.; Mortazaei Rishkhori, Kh. and Sabian, A., 2011. Age, growth and reproductive charactistics of the Turkmenian crested loach Metaschistura cristata (Nemacheilidae). Folia Zool. Vol. 60, No. 4, pp: 302-307.
30
Patimar, R.; Amouei, M. and Mir Ashrafi Langroudi, S.M., 2011. New data on the biology of Cobitis cf. satunini from the southern Caspian basin (northern Iran). Folia Zool. Vol. 60, No. 4, pp: 308-314.
31
Pauly, D., 1984. Fish population dynamics in tropical waters. A manual for use with programmable calculators. ICLARM studies and reviews (Manila). Vol. 8, pp: 1-325.
32
Prokofiev, A.M, 2009. Problems of the classification and phylogeny of nemacheiline loaches of the group lacking the preethmoid I (Cypriniformes: Balitoridae: Nemacheilinae). Journal of Ichthyology. Vol. 49, No. 10, pp: 874-898.
33
Ricker, W.E., 1975. Computation and interpretation of biological statistics of fish population. Bulletin 191. 382 p.
34
Saadati, M.J, 1977. Taxonomy and Distribution of the Freshwater Fishes of Iran. MSc Thesis, Colorado State University, Fort Colins. 212 p.
35
Sánchez-Carmona, R.; Encina, L.; Rodríguez, R. and Rodriguez- Sánchez, V., 2008. Age, growth and diet of the Iberian loach, Cobitis paludica in two different environments. Folia Zool. Vol. 57, No. 4, pp: 420-434.
36
Tabatabaei, S.N.; Hashemzadeh Segherloo, I.; Eagderi, S. and Zamani, M., 2015. Length-weight relationships of fish species in Kordan River (Namak Lake basin), Iran. Journal of Applied Ichthyology. Vol. 31, pp: 800-811.
37
Venema, S.C.; Christensen, J.M. and Pauly, D., 1988. Training in tropical fish stock assessment: A Narrative of Experience. FAO fisheries technical paper. Vol. 389, pp: 1-15.
38
Wootton, R.J., 1992. Fish Ecology. Chapman & Hall. 185 p.
39
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی کیفیت آب رودخانه گرگر با استفاده از جوامع کفزی و شاخص BMWP
این مطالعه به منظور ارزیابی کیفیت آب رودخانه گرگر براساس جوامع کفزی و شاخص BMWp انجام شده است. نمونهبرداری از 7 ایستگاه به صورت ماهیانه از بهمن 1393 تا آذر 1394 به مدت یک سال با استفاده از سوربر و گرب پترسون با سطح مقطع 225 سانتی متر مربع صورت گرفت. جهت اندازهگیری میزان مواد آلی از روش فیزیکی سوختن در کوره الکتریکی و به منظور آنالیز دانهبندی رسوبات از روش سری الک استفاده شد. در طی دوره بررسی در مجموع 19 رده، 58 خانواده (41 جنس و 16 گونه) از جوامع کفزی شناسایی و شمارش شدند. بیش ترین میزان فراوانی به ترتیب مربوط به خانوادههای مختلف بندپایان با 52/6 درصد، نرمتنان با 25 درصد، کمتاران با 22 درصد و سایر گروهها با 0/4 درصد نسبت به کل جمعیت کفزیان بوده است. در این مطالعه بیش ترین فراوانی به ترتیب مربوط به جنس Tubifex sp. از رده کمتاران، جنس Astrosimulium sp. از رده دوبالان، گونه Melanoides tuberculatus از رده شکمپایان گزارش شده است. براساس نتایج میانگین سالانه مقادیر شاخص BMWp ایستگاههای نمونهبرداری در رودخانه گرگر در سه طبقه کیفی طبقهبندی شد. در طی دوره بررسی ایستگاههای 1 و 2 در طبقه کیفی متوسط، ایستگاه های 6 و 7 در طبقه کیفی ضعیف و ایستگاههای 3، 4 و 5 در طبقه کیفی بسیار ضعیف طبقهبندی شدند. هم چنین بر اساس نمره متوسط هر تاکسون ASPT، کلیه ایستگاهها در طبقه کیفی احتمال آلودگی شدید قرار گرفتند.
http://www.aejournal.ir/article_82837_07a991ba9a23b24e06785c42bcd32769.pdf
2018-09-23
357
368
جوامع کفزی
رودخانه گرگر
کیفیت آب
شاخص BMWP
شاخص ASPT
سیده سحر
موسوی ده موردی
mosavi46@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی خاتم الانبیاء بهبهان، صندوق پستی: 151-63615
AUTHOR
پروانه
شوکت
parvane_39@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی خاتم الانبیاء بهبهان، صندوق پستی: 151-63615
LEAD_AUTHOR
سیمین
دهقان مدیسه
dehghan_86@yahoo.com
3
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور، اهواز
AUTHOR
لاله
موسوی ده موردی
mosavi1370@gmail.com
4
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی خاتم الانبیاء بهبهان، صندوق پستی: 151-63615
AUTHOR
اسماعیلی ساری، ع.، 1381. آلایندهها، بهداشت و استاندارد محیط زیست. تهران. انتشارات نقش مهر. 767 صفحه.
1
افخمی، م.، 1380. بررسی تأثیر پساب نیروگاه رامین بر کیفیت آب رودخانه کارون. سومین همایش ملی انرژی. گروه محیط زیست سازمان آب و برق خوزستان. 10 صفحه.
2
جرجانی، س.؛ قلیچی، ا.؛ اکرمی، ر. و خیرآبادی، و.، 1387. ارزیابی شاخص زیستی آلودگی و فون کفزیان نهر مادرسو پارک ملی گلستان. مجله شیلات. سال 2، شماره 1، صفحات 41 تا 52 .
3
حاتمی، ر.؛ محبوبی صوفیانی، ن.؛ ابراهیمی، ع. و همامی، م.، 1390. ارزیابی اثر پساب آبزی پروری بر جوامع درشت کفزیان و کیفیت آب رودخانه زایندهرود با استفاده از شاخصBMWP. محیط شناسی. سال 37، شماره 59، صفحات 43 تا 54.
4
خلفه نیلساز، م.؛ نجف پور، ن.؛ سبزعلیزاده، س.؛ صفی خانی، ح.؛ خدادادی، م. و داودی، ف.، 1372. گزارش نهایی پروژه بررسی لیمنولوژیک رودخانه کارون (گتوند تا بند قیر). وزارت جهاد سازندگی. سازمان تحقیقات و آموزش شیلات ایران. مرکز تحقیقات شیلاتی استان خوزستان.
5
دیانتی نسب، ع.، 1393. بررسی تعیین کیفیت زیستی رودخانه کمبل گچساران براساس شاخصهای بنتیک. پایاننامه کارشناسی ارشد علوم محیط زیست. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات خوزستان.
6
روغنی زادهگان، ن.، 1391. بررسی آلودگی رودخانه دز با استفاده از شاخصهای تنوع زیستی درشت کفزیان. پایاننامه کارشناسی ارشد علوم محیط زیست. دانشگاه آزاد اسلامی. واحد علوم و تحقیقات خوزستان.
7
شکری ساروی، م.؛ احمدی، م.؛ رحمانی، ح. و کامرانی، ا.، 1393. ارزیابی کیفیت آب براساس شاخص های زیستی هیلسنهوف، تنوع شانون- وینر و شاخص های محیطی در رودخانه تجن. فصلنامه علمی پژوهشی دانشگاه تربیت مدرس علوم و فنون شیلات. دوره 3، شماره 4، صفحات 43 تا 55.
8
طباطبایی، ط.؛ امیری، ف.؛ پذیرا، ع. و ممبینی، ش.، 1389. مطالعه ساختار و تنوع اجتماعات ماکروبنتیک در رودخانه حله. مجله علمی پژوهشی بیولوژی دریا. دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 2، شماره 1، صفحات 37 تا 46.
9
فارسی،ا.؛سیف آبادی،ج. وعوفی،ف.، 1392.تأثیر پارامترهای محیطی بر تراکم، بیوماس و تنوع درشت کفزیان سواحل استان بوشهر. نشریه بهره برداری و پرورش آبزیان. سال 2، شماره 1، صفحات 1 تا 11.
10
فتحی، پ.؛ ابراهیمی، ع.؛ میرغفاری، ن. و اسماعیلی، ع.، 1392. ارزیابی کیفی آب تالاب چغاخور با استفاده از شاخصهای BMWP و ASPT. نشریه شیلات. مجله منابع طبیعی ایران. دوره 66، شماره 1، صفحات 81 تا 93.
11
میررسولی، ا.؛ نظامی، ش.؛ خارا، ح. و قربانی، ر.، 1391. تأثیر پساب کارگاههای پرورش ماهی قزلآلای رنگینکمان بر روی بزرگ بیمهرگان کفزی رودخانه زرین گل. مجله توسعه آبزیپروری. سال 6، شماره 2، صفحات 81 تا 92.
12
محمدی روزبهانی، م.؛ روغنی زادهگان، ن. و دهقان مدیسه، س.، 1392. بررسی کیفیت آب رودخانه دز با استفاده از شاخص BMWP. فصلنامه علمی پژوهشی اکوبیولوژی تالاب. دانشگاه آزاد اسلامی واحد اهواز. سال 5، شماره ، صفحات 55 تا 66.
13
نظری، ح.؛ قدسیان، م. و خدادادی، ا.، 1384. مطالعه اثرات آلاینده ها بر کیفیت آب شفارود در استان گیلان. پنجمین کنفرانس بین المللی مهندسی محیطی. صفحات 43 تا 51.
14
Amirkolaie, K., 2008. Environmental impact of nutrient discharged by Aquaculture wastewater on the Haraz River. Fish Aquaculture Science. Vol.3, No. 5, pp: 275-279.
15
Arslan, N.; Salur, A.; Kalyoncu, H.; Mercan, D.; Barisik, B. and Odabasi, D.A., 2016. The use of BMWP and ASPT indices for evaluation of water quality according to macroinvertebrates in Kucuk Menderes River (Turkey). Biologia Section Zoology. Vol. 71, No. 1, pp: 49-57.
16
Barnes, R.D., 1987. Invertebrate Zoology. Fifth Edition, Saaunders College Publishing. 893 p.
17
Blomqvist, S., 1991. A Review: Quantitative sampling of soft-bottom sediments: problems and solutions. Marine Ecology Progress Series. Vol. 72, pp: 295-304.
18
Buchanan, D., 1984. Sediment Analysis Methods. Blackwell Scientific. pp: 41-46.
19
Camargo, J.A. and Gonzalo, C., 2007. Physicochemical and biological changes downstream from a trout farm outlet: Comparing 1986 and 2006 sampling surveys. Vol. 26, No. 2, pp: 405-414.
20
Chapman, D. and Jackson, j., 1996. Water quality monitoring- A practical guide to the design and implementation of freshwater quality studies and monitoring programmes. Published on behalf of United Nations Environment Programme and the World Health Organization.
21
Desroy, N.; Warembourg, C.; Dewarumez, J.M. and Dauvin, J.C., 2002. Macrobenthic Resources of the Shallow Soft Bottom Sediments in the Eastern English Channel and Southern North Sea. ICES Marine Science. Vol. 60, pp: 120-131.
22
Ekeroth, N.; Blomqvist, S. and Hall, P., 2016. Nutrient fluxes from reduced Baltic Sea sediment: effects of oxygenation and macrobenthos. Marine Ecology Progress Series. Vol. 544, pp: 77-92.
23
Gray, J.S., 1981. The ecology of marine sediments. Cambridge University press. Cambridge. 187 p.
24
Hilsenhoff, W.L., 1982. Usinga bioticindex to evaluate water quality in streams. Technical Bulletin Number 132. Department of natural Resources, Madison, WI.
25
Jones, D.N., 1986. A Find Guide to the Seashores of Kuwait and the Arabian Gulf. University of Kuwait, Bland Ford Press. 182 p.
26
Kazanci, N.; Turkmem, G.; Ekingen, P. and Basoren, O., 2013.Preparation of a biotic index (Yeşilırmak BMWP) for water quality monitoring of Yeşilırmak River (Turkey) by using benthic macroinvertebrates. Review of Hydrobiology. Vol. 6, No. 1, pp: 1-29.
27
Kenny, M.A.; Sutton-Grier, A.E.; Smith, R.F. and Gresens, S.E., 2009. Benthic macroinvertebrates as indicators of water quality: The e intersection of science and policy. Journal of Terrestrial Arthropod. Vol. 2, pp: 99-128.
28
Keshavarz, M.; Dabbagh, A.B. and Soyuf Jahromi, M., 2016. Biodiversity Indices for Macrobenthic Community structures of Mangrove Forests, Khamir Port, Iran. International Journal of Animal and Veterinary Sciences. Vol. 3, No. 1, pp: 1029-1043.
29
Kevin, B. Lunde., Vincent H. Resh., 2011. Development and validation of a macroinvertebrate index of biotic integrity (IBI) for assessing urban impacts to northern California freshwater wetlanda. Environmental Monitoring and Assessment. Vol. 6, pp: 3653-3674.
30
Holme, N.A. and Mcintyre, A.D., 1984. Methods for study of marine benthos, second edition, Oxford Blackwell Scientific publication. 387 p.
31
Majnunian, H., 1998. River conservation, biophysical attributions, habitat values and extraction rules. (1nd Ed.). Tehran. environmental protection organization. pp: 16 -22 (In Persian).
32
Mandaville, S.M., 2002. Benthic Macroinvertebrates in Freshwaters- Taxa Tolerance Values, Metrics, and Protocols. Soil and Water Conservation Society of Metro Halifax, Project. 128 p.
33
Mark, A.; Walag, P.; Oljae, M. and Canencia, P., 2016. Physico-chemical parameters and macrobenthic invertebrated of the intertidal zone of Gusa, Cagayan de Oro CITY, Philipines. Aes Bioflux. Vol. 8, No. 1, pp: 71-82.
34
Mellenby, H., 2010. Animal life in freshwater. Great Britain, Cox & wyman Ltd., Fakenham. 308 p.
35
Mustapha, M. and Yakubu, H., 2015. International Journal of Environmental Science and Development. Lakes, reservoirs and ponds. Vol. 9, pp: 56-66.
36
Mora, S.D. and Sheikholeslsmi, M.R., 2002. ASPT: Contaminant Screening Program: Final report: Interpretation of Caspian Sea sediment data. Caspian Environment Program (CPE). 27 P.
37
Oscoz, J.; Galicia, D. and Miranda, R., 2011. Identification Guide of Freshwater Macroinvertebrates of Spain. Springer 1st Edition. 174 p.
38
Page, L.R., 2006. Modern insights on gastropod development: Reevaluation of the evolution of a novel body plan. Integrative and Comparative Biology. Vol. 2, pp: 134-143.
39
Pennak, R., 2007. Freshwater invertebrates of the United States. The Ronald press company, New York. 953 p.
40
Qane, A., 2004. Identifying macroinvertebrates population structure of Chaf-roud river in Guilan province regarding some water qualitative factors (within Urmal malal village Boundary). Msc.: Teaching training university. 98 p (Translate in Persian).
41
Pawar, P.R., 2015. Monitoring of pollution using density, biomass and diversity indices of macrobenthos from mangrove ecosystem of Uran, Navi Mumbai, and West Coast of India. International Journal of Animal Biology. Vol. 1, pp: 136-145.
42
Putro, S.P.; Widowati, P. and Suhartana, D., 2015. Assessment Level of Severity of Environmental Disturbance Caused by Aquaculture Activities Using Abundance-Biomass Curves of Macrobenthic Assemblages. International Journal of Environmental Science and Development. Vol. 6, pp: 178-181.
43
Rahbari, K.; Bagher Nabavi, S. M. and Moebed, P., 2006. Study of different methods of biological assessment and biodiversity for water resources quality calculating diversity indices of karoun River’s bed from Molasani to Darekhovein, 7th International River Engineering Conference, Ahwaze. Iran.
44
Ramesh, C.; Sharma, G.B. and Sngh, D., 2004. Aquatic macro invertebrate Diversity in Nanda Devi biosphere Reserve, India. Vol. 24, No. 4, pp: 211-221.
45
Romachandra, T.V.; Ahalya, N. and Murthy, C.R., 2005. Aquatic ecosystems conservation, restoration and management capital publishing Company. 61 p.
46
Sharifinia, M.; Eimanpournamin, J. and Bozorgy Makrany, A., 2012. Assessment Tajan river ecological using benthic invertebrates of great nutritional and biological indicators. Journal of Applied Ecology, No. 1, page 80. Pathogenic risks. International Journal of PharmTech Research. Vol. 6, No. 2, pp: 455-461.
47
Saunders, J.; Al ZahedKh, M. and Paterson, D., 2007. The impact of organic pollution on the macrobenthic fauna of Dubai creek [UAE]. Marine pollution Bulletin. Vol. 11, pp: 1715-1723.
48
Sterreer, W., 1981. Marine Fauna and Flora of Bermuda, A Systematic Guide to the Identification of Marine Organisms. John Willy and Sons. 742 p.
49
Walton, S.G., 1974. Hand book of marine science, Vol.1, C RC press. Cleveland. pp: 117-126.
50
Walag, A.M.P. and Canencia, M.O.P., 2016. Physico chemical parameters and macrobenthic invertebrates of the intertidal zone of Gusa, Cagayan de Oro City, Philippines. AES Bioflux. Vol. 8, pp: 71-82.
51
Yap, C.K.; Rahim Ismail, A.; Ismail, A. and Tan, S.G., 2003. Species Diversity of Macrobenthic Invertebrates in the Semenyih River, Peninsular Malaysia. Pertanika J. Agric. Vol. 26, pp: 139-146.
52
Zalmon, L.R.; Krohling, W. and Ferrelra, C.E.L., 2011. Abundance and diversity patterns of the sessile macrobenthic community associated with environmental gradients in Vitória Harbor, southeastern Brazil. Zoologia. Vol. 28, pp: 641-652.
53
Zeybek, M.; Kalyoncu, H.; Karakas, B. and Ozgul, S., 2014. The use of BMWP and ASPT indices for evaluation of water quality according to macroinvertebrates in Degirmendere stream. Department of biology, faculty of Arts and sciences, Suleyman Demirel University. Isparta, Turkey. Turkish Journal of Zoohogy. Vol. 38, pp: 603- 613.
54
Zhu, D. and Chang, J., 2008. Annual variations of biotic integrity in the upper Yangtze River using an adapted index of biotic integrity [IBI]. Ecological Indicators. Vol. 8, pp: 564-572.
55
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر عوامل محیطی بر تنوع و الگوی پراکنش جوامع بزرگ بیمهرگان کفزی رودخانه زرین گل، استان گلستان
موجودات کفزی در محیطهای آبی نقش مهمی در تغذیه آبزی، جابجایی وچرخش مواد غذایی در اکوسیستم آبی و تبدیل مواد آلی به مواد معدنی دارند. در مطالعـه حاضـر، بـه منظور ارزیابی زیستی رودخانه زرین گل در کاربریهای مختلف از ترکیب جمعیت بزرگ بیمهرگان کفزی استفاده شد. نمونه های کفزی با استفاده از سوربرسمپلر با سطح پوشش 900 سانتی متر مربع در فصل زمستان و بهار (به مدت 6 ماه) از12 ایستگاه با سه تکرار گرفته شد. در مجموع 6192 نمونه از موجودات کفزی شناسایی شدند که شامل 31 خانواده و 9 راسته بودند. سه جمعیت غالب از لحاظ فراوانی را افمروپترا (37 %)، تریکوپترا (23/45%) و دیپترا (سیمولیده (16%) و شیرونومیده (12/4%) تشکیل دادند. حداکثر تراکم کل جانداران در طول مدت نمونه گیری 7944/44 عدد در متر مربع در ایستگاه 2 و حداقل آن 2144/44 عدد در متر مربع در ایستگاه 1 (ایستگاه پایین دست تحت فعالیت کشاورزی) بود. هم چنین لازم به ذکر است که از ایستگاههای بالادست (دست نخورده) به طرف پاییندست (تحت تاثیر فعالیتهای انسانی شامل کشاورزی و پرورش ماهی)؛ مقادیر شاخصهای زیستی - جمعیتی و فراوانـی ارگـانیزمهـای حسـاس کـاهش و فراوانـی ارگـانیزمهـای مقـاوم افـزایش یافـت. بدین ترتیب فعالیت های انسانی مختلف در حاشیه رودخانه زرین گل علاوه بر تاثیر منفی بر فراوانی و تنوع بزرگ بی مهرگان کفزی، کیفیت آب را نیز تنزل داده است.
http://www.aejournal.ir/article_82871_47537412ebbe0c89eff1570511ba2532.pdf
2018-09-23
369
376
بزرگ بی مهرگان کفزی
ترکیب جمعیت
تنوع و پراکنش
رودخانه زرین گل
محمد
قلی زاده
gholizade_mohammad@yahoo.com
1
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، صندوق پستی:163
LEAD_AUTHOR
سکینه
بویری
2
گروه شیلات، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، صندوق پستی:163
AUTHOR
احمدی، م. ر. و نفیسی، م.، 1380. شناسایی موجودات شاخص بیمهره آبهای جاری. انتشارات خبیر، 240 صفحه.
1
افشین،ی.،1363. رودخانههای ایران. انتشارات وزارت نیرو. 575 صفحه.
2
حاجیمرادلو، ا.؛ قربانی، ر.؛ رحمانی، ح.؛ ایرانی، ع.؛ نعیمی، ا. و ملایی، م.، 1386. مطالعه ترکیب و فراوانی کفزیان و ماهیان آبراهه منتهی به تالاب گمیشان. مجله شیلات. دانشگاه آزاد اسلامی واحد آزادشهر. سال 1، پیش شمار 1، صفحات 27 تا 38.
3
حسینخضری، پ .، 1379. بررسی بیمهرگان در استخرهای مزارع پرورش میگو سایت حله، بوشهر. مرکز تحقیقات شیلات خلیجفارس، بوشهر، 14 صفحه.
4
خوشاخلاق، م.؛ کامرانی، ا.؛ ابراهیمی، ع. و سورینژاد، ا.، ۱۳۹۴. اثر پساب مزارع پرورش ماهی قزلآلا بر بزرگ بیمهرگان کفزی رودخانه ماربر سمیرم. مجله بوم شناسی آبزیان. سال 5، شماره 1، صفحات 103 تا 112.
5
عبدلی, ا. و رحمانی, ح.، 1380. بررسی عادات غذایی دو گونه Neogobius fluviatilis, Neogobius melanostomusدر نهر مادرسو پارک ملی گلستان, مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان, نسخه ، صفحات 3 تا 15.
6
کمالی، ا.؛ حاجیمرادلو، ا.؛ قربانی، ر.؛ رحمانی، ح.؛ یلقی، س.؛ نعیمی، ا. و ملایی، م.، 1386. مطالعه لیمنولوژیک رودخانه کبودوال علیآباد کتول استان گلستان. مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان. 36 صفحه.
7
قانعساسانسرایی، ا.؛ احمدی، م.؛ اسماعیلی، ع.و میرزاجانی، ع.، 1385. ارزیابی زیستی رودخانه چافرود (استان گیلان) با استفاده از ساختار جمعیت ماکروبنتوز. مجله علوم فنون کشاورزی و منابع طبیعـی. سال 17، شماره 1، صفحات 247 تا 257.
8
محبوبیصوفیانی،ن.ونادری،غ.،1379. کلید شناسایی بیمهرگان نهرها و رودخانهها. انتشارات جهاد دانشگاهی دانشگاه صنعتی اصفهان. 131 صفحه.
9
نیکویان، ع.، 1376. بررسی تراکم، پراکنش، تنوع و تولیدمثل بیمهرگان کفزی در خلیج چابهار. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم تحقیقات تهران. 95 صفحه.
10
وزارت نیرو. 1370. مطالعات مرحله اول طرح تغذیه مصنوعی محدود رودخانه گرمابدشت زرینگل (جلد 2) مطالعات هیدرولوژی. 68 صفحه.
11
یحیوی، م.، 1379. مطالعهای از توان تولید بیمهرگان در رودخانه کرج. مجله آبزیان. سال 8، صفحات 45 تا 49.
12
Allan, J.D., 1995. Stream Ecology: Structure and Function of Running Waters. Chapman and Hall, New York. 388 p.
13
Alongi, D.M., 1989. Ecology of tropical soft botto1n benthos: a review with emphasis on emerging concepts. Rev. Biol. Trop. Vol. 37, No. 1, pp: 85-100.
14
Camargo, J.A., 1994. The importance of biological monitoring for the ecological risk-assessment of freshwater pollution: A case study. Environment International. Vol. 20, pp: 229-238.
15
Cooper, C.M. and Knight, S.S., 1991. Water quality cycles in two hill land streams subject to natural, municipal, and non point agricultural stresses in the Yazoo Basin of Mississipi. Verth. Internal. Verein. Limnol. Vol. 24, pp: 1654-1663.
16
Feminella, J.W., 1999. Biotic Indicators of water quality the Alabama watershed demonstration project. Aubum University. Vol. 31, pp: 52-62.
17
Harkantra, S.N. and Parulekar, A.H., 1994. Soft sediment dwelling macro invertebrates of Rajapurbuy, central west coast of Indian. Indian Journal Marine Science. Vol. 33, No. 1, pp: 31-34.
18
Kazancheev, E.N., 1981. Ryby, J (aspiiskogoMorya [Fishes of the Caspian Sea]. Legkaya i PischchevayaPromyshlertnost, Moskva. 167 p.
19
Martínez, J. and Esteve, M., 2007. Gestion integrada de cuencas costeras: dinamica de los nutrientes en la cuenca del Mar Menor (sudeste de Espana). Revista de Dinamica de Sistemas. Vol. 3, pp: 2-20.
20
Metcalfe-Smith, J.L., 1994. Biological Water Quality Assessment of Rivers: Use of Macroinvertebrate Communities, in the Rivers Handbook (Eds: P. Calow, G.G. Petts), Vol. 2, Blackwell Science, London.
21
Mohammad, S.Z., 1995. Observation on the benthic macrofauna of the soft sediment on western side of the Arabian Gulf (ROMPE Sea Area) with respect to 1991. Gulf war oil spill. Indian J Marine Science. Vol. 24, No. 3, pp. 147-152.
22
Needham, J.G. 1976. A guide to the study of freshwater biology. Holden Sanfrancisco. 107 p.
23
Wen, T.L., 1974. Handbook of common methods in limnology Institute of Environmental studies and department of biology, Baylor University, Texas, U.S.A. pp:120-130.
24
Pescador, M.L.; Rasmussen, A.K. and Harris, S.C., 2004. Identification manual for the caddis fly larvae of Florida, Department of Environmental Protection, Florida. 653 p.
25
Zivic, I.; Markovic, Z.; Filipovic-Rojka, Z. and Zivic, M., 2009. Influence of a trout farm on water quality and macrozoobenthos communities of the receiving stream. International. Review of Hydrobiology. Vol. 94, pp: 673-687.
26
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی تنوع زیستی و آلودگی جوامع بنتیک خوریات لافت و تیاب در استان هرمزگان
به منظور بررسی جوامع بنتیک در خوریات لافت و تیاب، نمونه برداری دردو فصل سرد وگرم و با انتخاب 4 ایستگاه و 3 تکرار از لایه بنتیک با استفاده از گراب ون-وین صورت پذیرفت. نتایج حاصله نشان می دهد که در فصل گرم پرتاران بامیانگین 19عدد درمترمربع بیش ترین فراوانی را دارند درحالی که شکم پایان درفصل سرد دارای کم ترین فراوانی (کم تر از صفر) دارند. باتوجه به میانگین تراکم ها در ایستگاه4 خورتیاب، ماکروبنتوزها ازنظرمکانی اختلاف معنی داری نشان داده اند (0/05>p) ومکان در تراکم ماکروبنتوزها تاثیرگذارمی باشد. شاخص مارگالف وشانون چنین بیان می کنند که تمامی مناطق مورد مطالعه از نظر آلودگی در وضعیت مطلوبی به سر می برند و این در مناطق گرمسیری امری طبیعی محسوب شود. شاخص اونس نشان می دهد که خور لافت و تیاب از نظر آلودگی درشرایط مطلوبی به سر می برند و تقریباً محیط های بدون آلودگی می باشند. از دید شاخص سیمپسون نیز مناطق مورد مطالعه تحت تاثیر آلودگی جدی قرار ندارند. شاخص اکولوژیک منحنی فراوانی – وزن نیز نشان می دهد که در تمام ایستگاه ها منحنی وزن بالای منحنی فراوانی قرار دارد و این نشان دهنده یک محیط بدون استرس می باشد. براساس نتایج به دست آمده تنها ایستگاه 4 خورتیاب با توجه به موقعیت مکانی آن یک محیط تحت استرس می باشد که نتیجه ورود و تاثیر مستقیم پسماندها از مزارع پرورش میگو می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_82911_24a008667457527d3ebe8368bb42640c.pdf
2018-09-23
377
384
تنوع زیستی
جوامع بنتیک
خور
تیاب
لافت
استان هرمزگان
رویا
صحراگرد
royasahragard@yahoo.com
1
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
AUTHOR
مازیار
یحیوی
maziar_yahyavi@yahoo.com
2
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران
LEAD_AUTHOR
کیوان
اجلالی خانقاه
k_ejlali@yahoo.com
3
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، بندرعباس، صندوق پستی: 1597
AUTHOR
اجلالی، ک.، 1392. ارزیابی خطر اکولوژیک آلودگی رسوبات بر فون کفزیان در ناحیه ساحلی بندرعباس. رساله دکترای تخصصی. دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات تهران.
1
ﭘﺎرﺳﺎﻣﻨﺶ، ا.؛ ﻧﺠﻒﭘﻮر، ن.؛ ﺧﺪادادی، م.؛ داودی، ف. و ﺳﺒﺰﻋﻠﻴﺰاده، س.، 1372. ﺑﺮرﺳﻲﻣﻘﺪﻣﺎﺗﻲﻫﻴﺪروﺑﻴﻮﻟﻮژﻳﻚ ﺧﻮرﻳﺎت اﺳﺘﺎن خوزستان، اﻳﺮان. ﺻﻔﺤﻪ 67 .
2
عطاران فریمان، گ.، 1380. پراکندگی و تنوع جمعیت پرتاران در خور باهو کلات، شمال شرقی دریای عمان. پژوهش و سازندگی. شماره 35، صفحات 79 تا 83.
3
خواجه پور، س.، 1385. بررسی و تعیین تراکم و تنوع و توده زنده ماکروبنتوزها در سواحل خوزستان. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشگاه آزاد اسلامی واحد علوم و تحقیقات.
4
Bellan, G. and Santini, D., 1980. Handbook of Ecological Indicators for Assessment of Ecosystem Health, Second. edited by Sven E. Jørgensen, Liu Xu, Robert Costanza.
5
Bruyne, R.H.DE., 2003.The complete encyclopedia of shells. REBEO publishers.
6
Costanza, R. and Folk, C., 1997. Valuing ecosystem services with efficiency, fairness and sustainability as goals G. Daily (Ed.), Natures Services: Social Dependence on Natural Ecosystems, Island Press, Washington, D.C. pp: 49-68.
7
Donald, T.B.; Dance, S.P.; Moolenbeek, R.G. and Oliver, P.G., 1995. Seashells of eastern Arabia. Motivate publishing. 8 p.
8
Fauchald, C., 1977.The polychaete worms definition and keys to the orders familles and genera. Black well science.
9
Greg, P.; Rouse, W. and Pleaijel, F., 2001. Polychaetes. Oxford University Press.
10
Holme, N.A. and Mcintyre, A.D., 1984. Methods for study of marine benthos, Second Edition, Oxford Blackwell Scientific Publication. 387 p.
11
Marques, J.C.; Salas, F.; Patricio, J.T.; Eixeira, H. and Neto, J.M., 2009. Ecological Indicators for Coastal and Estuarine Environmental Assessment. WIT Press. 208 p.
12
Nikoueian, A.R., 2001. Estimation of Potential Yield on Demersal Fishery Resources Based on the Production of Macrobenthic Fauna in the Chabahar Bay. Iranian Scientific Fisheries Journal. Vol. 10, pp: 77-102. (in Persian).
13
Ludwing, J.A. and Reynolds, J.F., 1988. Statistical ecology, A primer methods and computing, John Wiley and sons pub. New York. 337 p.
14
Izadpanahi, Q.; Owfi, F. and Haqshenas, A., 2007. Report of Persian Gulf Hydrobiology in the Bushehr Province Waters. Iranian Fisheries Research Organization. 100 p. (in Persian)
15
Paine, R.T., 1966. Food web complexity and species diversity. American Nature. Vol. 100, pp: 65-75.
16
Pielou, E.C., 1969. An Introduction to Mathematic Ecology. Wiley interscience, New York. 586 p.
17
Simpson, E.H., 1949. Meashuement of diversity Nature. Vol. 163, 68 p.
18
Welch, E.B., 1992. Ecological effects of wastewater. E&FN Spon Publ.co. London. Vol. 142, 18 p.
19
Wolfgang, S., 1986. Marine fauna and flora of Bermuda; AWiley interscience, New York, USA.
20
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی بوم شناختی جوامع مایوفونی رویشگاه حرای مل گنزه، شمال خلیج فارس
از آن جا که بی مهرگان کفزی به عنوان شاخص های زیستی در پایش های دریایی به کار می روند، به منظور بررسی بوم شناختی اجتماعات مایوفونی جنگل حرای مل گنزه، نمونه برداری طی دو فصل گرم و سرد، از 3 ایستگاه با سه سطح جزر و مدی صورت گرفت و 7 گروه مایوفونی شامل روزنه داران، استراکودا، دوکفه ای ها، شکم پایان، نماتودا، پاروپایان و کرم های کم تار شناسایی شدند که بیش ترین تراکم متعلق به نماتودا و پس از آن به ترتیب روزنه داران، استراکودا، دوکفه ای ها، پاروپایان، شکم پایان و کرم های کم تار قرار داشت. میانگین تراکم مایوفونا در فصل زمستان و تابستان اختلاف معنی داری نداشت (0/05<P)، ولی در میان ایستگاه های مختلف این اختلاف معنی دار بود (05/0 >P). درصد TOC در فصل زمستان بیش تر از تابستان و در بین فصول و ایستگاه ها دارای اختلاف معنی داری بود (05/0 >P) و ایستگاه 1 دارای بیش ترین میزان TOC نسبت به ایستگاه های 2و 3 بود. در طول سال در ایستگاه 1 از ناحیه بالای جزر و مدی تا ناحیه پایین جزر و مدی شاهد کاهش تقریبی مقدار TOC رسوبات بوده ولی در دو ایستگاه دیگر این روال برعکس بود. نتایج بیانگر غالب بودن رسوبات سیلتی رسی در ایستگاه 1 و پس از آن به ترتیب ایستگاه های 2 و3 بود. بیش ترین تراکم مایوفونا در دو فصل در ایستگاه 1 و سپس ایستگاه 2و 3 مشاهده شد. نتایج آزمون همبستگی پیرسون نشان داد که رسوبات سیلتی-رسی و TOC اثر معنی داری بر تراکم مایوفونا دارد.
http://www.aejournal.ir/article_82926_6d56dbda3467580f49995c854b681bdc.pdf
2018-09-23
385
396
بوم شناختی
مایوفونا
جنگل حرای مل گنزه
پارامترهای محیطی
فاطمه
نامجو
fatima_namjoo@yahoo.com
1
گروه شیلات و بیولوژی دریا، پژوهشکده خلیج فارس، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ایران
AUTHOR
امیر
وزیری زاده
vaziriamir@yahoo.com
2
گروه شیلات و بیولوژی دریا، پژوهشکده خلیج فارس، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
علی
فخری
ali.fakhri2000@gmail.com
3
گروه شیلات و بیولوژی دریا، پژوهشکده خلیج فارس، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ایران
AUTHOR
پوروخشوری، س.ز.، 1374. بررسی فرامینیفرهای عهد حاضر با توجه به ویژگی های رسوبی و اکولوژیکی در پهنه جزر و مدی خلیج فارس (بندر بوشهر- بندر گناوه). پایان نامه کارشناسی ارشد، دانشگاه تهران، دانشکده علوم، گروه زمین شناسی. 137 صفحه.
1
صفیاری، ش.،1382. جنگلهای مانگرو (جلد دوم جنگل های مانگرو ایران). موسسه تحقیقات جنگل ها و مراتع ایران. 510 صفحه.
2
عاربی، ا.؛ سواری، ا. و وزیری زاده، ا.، 1391. مطالعه بوم شناختی اجتماعات ماکروبنتیک رسوبات جزر و مدی دلوار (بوشهر). نشریه علمی پژوهشی اقیانوس شناسی. جلد3، شماره 12، صفحات27 تا 36.
3
کمالی فر، ر.، 1389. ارزیابی وضعیت اکولوژیک مانگرو بردستان با استفاده از ماکروبنتوز. پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشکده علوم دریایی اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر. 100 صفحه.
4
میردار، ج.؛ نیکویان، ع.؛ کرمی، م. و عوفی، ف.، 1383. بررسی فراوانی مایوبنتوزها و ارتباط آن ها با وضعیت رسوبات بستر در خورهای شمالی استان بوشهر. مجله علمی شیلات ایران. سال 13، شماره 2، صفحات 151 تا 162.
5
نامجو، ف.، 1389. بررسی اکولوژیک مایوفونای جنگل مانگرو بردستان-دیر (بوشهر) با تأکید بر استراکودا. پایان نامه کارشناسی ارشد دانشکده علوم دریایی اقیانوسی، دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر. 134 صفحه.
6
وزیری زاده، ا.، 1375. مطالعه وضعیت جوامع ماکروفونا در منطقه بین جزر و مدی سواحل استان بوشهر، پایان نامه کارشناسی ارشد بیولوژی دریا، دانشگاه چمران اهواز. 194صفحه.
7
ولوی، ح.، 1376. بررسی ساختار اجتماعات پرتاران مناطق بین جزر و مدی استان بوشهر. پایان نامه کارشناسی ارشد بیولوژی ماهیان دریا. دانشگاه شهید چمران اهواز. 120 صفحه.
8
Alongi, D.M.; Clough, B.F. and Robertson, A.I., 2005. Nutrient-use efficiency in arid-zone forests of the mangroves Rhizophora stylosa and Avicennia marina. Aquatic Botany. Vol. 82, pp: 121-131.
9
Alongi, D.M. and Dixon, P., 2000. Mangrove primary production and above and below-ground biomass in Sawi Bay, southern Thailand. Phuket. Marine Biology. Vol. 22, pp: 31-38.
10
Ansari, Z.A. and Ingole, B., 2002. Effect of an oil spill from MV Sea Transporter on intertidal meiofauna at Goa, India. Marine Pollution Bulletin. Vol. 44, pp: 396-402.
11
Bergin, F.; Kucuksezgin, F.; Uluturhan, E.; Barut, I.F.; Meric, E.; Avsar, N. and Nazik, A., 2006. The response of benthic foraminifera and ostracoda to heavy metal pollution in Gulf of Izmir (Eastern Aegean Sea). Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 66, pp: 368-386.
12
Bogut, I.; Vidakovic, J.; Cerba, D. and Palijan, G., 2009. Epiphytic meiofauna in stands of different submerged macrophytes. Ekoloji. Vol. 18, No.70, pp: 1-9.
13
Borja, A.; Franco, J. and Perez, V., 2000. A marine Biotic Index to establish the ecological quality soft-bottom benthos within the European Estuarine and coastal Environment. Marine pollution Bulletin. Vol. 40, pp: 1100-1114.
14
Bouillon, S.; Moens, T.; Overmeer, I.; Koedam, N. and Dehairs, F., 2004. Resource utilization patterns of epifauna from mangrove forests with contrasting inputs of local versus imported organic matter. Marine Ecology Progress Series. Vol. 278, pp: 77-88.
15
Brown, P.J. and Taylor, R.B., 1999. Effects of trampling by humans on animals inhabiting coralline algal turf in the rocky intertidal. Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 135, pp: 45-53.
16
Bryan, G.W. and Langston, W.J., 1992. Bioavailability, accumulation and effects of heavy metals in sediments with special reference to United Kingdom estuaries: a review. Environmental Pollution. Vol. 76, pp: 89-131.
17
Buchanan, J.B., 1984. Sediment analysis. In Eleftheriou, A., McIntyre, A, editors. (Eds.). Methods for the Study of Marine Benthos. Oxford Blackwell Scientific Publications. pp: 41-65.
18
Bunt, J.S. and Boto, K.G., 1979. A survey method for estimating potential levels of mangrove forest primary production. Marine Biology. Vol. 52, pp: 123-128.
19
Chester, J.S.; Peter, C.; Katrin, L. and Sandra, J.M., 2008. Assessing meiofaunal variation among individuals utilising morphological and molecular approaches: an example using the Tardigrada. BMC Ecology. Vol. 8, 7 p.
20
Chindah, A.C. and Braide, S.A., 2001. Meiofauna Occurrence and Distribution in Different Substrate Types of Bonny Brackish Wetland of the Niger Delta. Application Sci. The Journal of Environmental Management. Vol. 5, pp: 33-41.
21
Chinnadurai, G. and Fernando, O.J., 2007. Meiofauna of mangroves of the southeast coast of India with special reference to the free-living marine nematode assemblage. Estuarine, Coastal and Shelf Science. Vol. 72, pp: 329-336.
22
Coull, B.C., 1999. Role of meiofauna in estuarine soft-bottom habitats. Australian. Ecology. Vol. 24, pp: 327-343.
23
Dvorak, J. and Imhof, G., 1998. The role of animals and animal communities in wetlands. In: Westlake DF, Kvet J and Szczepanski A (eds), The production ecology of wetlands: the IBP synthesis, Cambridge University Press, Cambridge. pp: 211-318.
24
Frame, K.; Hunt, G. and Roy, K., 2007. Intertidal meiofaunal biodiversity with respect to different algal habitats: a test using phytal ostracodes from Southern Californiay. Hydrobiologia. Vol. 586, pp: 331-342.
25
Giere, O., 1993. Meiobenthology. The Microscopic Fauna in Aqatic Sediments. Springer Verlag, Berlin. 234 p.
26
Govindan, K., 2002. Marine benthos, A future perspective. Proceeding of the National Seminar on Creeks, Estuaries and Mangroves. Pollution and Conservation. pp: 28-30.
27
Gray, J.S. and Elliot, M., 2009. Ecology of marine sediments. 2th edi. Oxford university press. 225 p.
28
Grego, M.; De Troch, M.; Forte, J. and Malej, A., 2009. Main meiofauna taxa as indicator for assessing the spatial and seasonal impact of fish farming. Marine Pollution Bulletin. Vol. 58, pp: 1178-1186.
29
Gupta, P.K., 2001. Methods in environmental analysis water, soil and air. Agrobios (India). 408 p.
30
Hach, A., 1988. Procedures for water and waste water analysis. Publication 3061. Jayaraju, N., Reddi, K.R., 1996. Impact of pollution on coastal zone monitoring with benthic foraminifera of Tuticorin, southeast coast of India. Indian Journal of Marine Sciences. Vol. 25, pp: 376-378.
31
Hegazy, A.K., 1998. Perspectives on survival, phenology, litter fall and decomposition, and caloric content of Avicennia marina. Arid Environments. Vol. 40, pp: 417-429.
32
Hicks, G.R.F. and Coull, B.C., 1983. The ecology of marine meiobenthic harpacticoid copepods. Oceanography and Marine Biology an Annual Review. Vol. 21, pp: 67-175.
33
Higgings, R.P. and Thiel, H., 1988. Introduction to the Study of Meiofauna. Smithsonian Institution Press, Washington DC. pp: 328-331.
34
Holme, N.A. and McIntyre, A.D., 1984. Methods for the study of marine benthos. IBP Handbook. No. 16. Second edition. Oxford, U. K. 387 p.
35
Horne, D.J. and Boomer, I., 2000. The role of Ostracoda in saltmarsh meiofaunal communities. In: Sherwood, B.R., Gardiner, B.G., Harris, T. (Eds.), British Saltmarshes. Linnean Society, London, pp: 181-202.
36
Hyland, J., 2005. Developing Indicators of Stress in the Marine Benthos: the UNESCO/IOC Ad-Hoc Benthic Indicator Group. Magni, P., J. Hyland, G. Manzella, H. Rumohr, P. Viaroli, A. Zenetos (Eds.). Proceedings of the Workshop "Indicators of Stress in the Marine Benthos", Torregrande-Oristano (Italy), 8–9 October 2004. Paris, UNESCO/IOC, IMC, 2005. Iv + 46 pp. (IOC Workshop Reports, 195) (IMC Special Publication ISBN 88-85983-01-4).
37
Kathiresan, K. and Bingham, B.L., 2001. Biology of mangroves and mangrove ecosystems. Advances in Marine Biology. Vol. 40, pp: 81-251.
38
Lee, S.Y., 1995. Mangrove outwelling: a review. Hydrobiologia. Vol. 295, pp: 203-212.
39
Liu, L.; Li, F.; Xiong, D. and Song, C., 2006. Heavy metal contamination and their distribution in different size fractions of the surficial sediment of Haihe River, China. Environmental Geology. Vol. 50, pp: 431-438.
40
Liu, L.; Li, F.; Xiong, D. and Song, C., 2006. Heavy metal contamination and their distribution in different size fractions of the surficial sediment of Haihe River, China. Environmental Geology. Vol. 50, pp: 431-438.
41
MacLachlan, A. and Brown, A.C., 2006. Ecology of sandy shores. Academic Press. 392 p.
42
Matthijs, S.; Tack, J.D.; Speybroeck, V. and Koedam, N., 1999. Mangrove species zonation and soil redox state, sulphide concentration and salinity in Gazi Bay (Kenya), a preliminary study. Mangroves and Salt Marshes. Vol. 3, pp: 243-249.
43
McIntyre, A.D. and Eleftheriou, A., 2005. Methods for study of marine benthose.3rd edition. Uk; malden, USA: Blackwell publication. 387 p.
44
Moore, C.G. and Bett, B.J., 1989. The use of meiofauna in marine pollution impact assessment. Zoological Jornal of the Linnean Society. Vol. 69, pp: 263-280.
45
Nagelkerken, I.; Blaber, S.J.M.; Bouillon, S.; Green, P.; Haywood, M.; Kirton, L.G.; Meynecke, J.O.; Pawlik, J.; Penrose, H.M.; Sasekumar, A. and Somerfield, P.J., 2008. The habitat function of mangroves for terrestrial and marine fauna: A review. Aquatic Botany. Vol. 89, pp: 155-185.
46
Nybakken, J.W., 1997. Marine Biology: An Ecological Approach, fourth ed. Addison Wesley Longman, Inc., Menlo Park, California. 481 p.
47
Ruiz, F.M.; Abad, A.M.; Bodergat, P.; Carbonel, J.; Rodriguez, L. and Yasuhara, M., 2005. Marine and brackish-water ostracods as sentinels of anthropogenic impacts. Earth-Science Reviews. Vol. 72, pp: 89-111.
48
Sajan, S.; Joydas, T.V. and Damodaran, R., 2009. Meiofauna of Western Continental Shelf of India, Arabian Sea. Estuarine Coastal & Shelf Science. Vol. 86, pp: 665-674.
49
Serjio, N. and Fabiane, G., 2003. Meiofauna and macrofauna communities in a mangrove from the Isaland of Santa Catarina, south Brazil. Hydrobiologia. Vol. 505, pp: 159-170.
50
Torres-Pratts, H. and Schizas, N.V., 2007. Meiofaunal Colonization of Decaying Leaves of the Red Mangrove Rhizophora mangle, in Southwestern Puerto Rico. Caribbean Journal of Science. Vol. 43, pp:127-137.
51
Valipour-kahrood, H.; korori, A.A.; Pirseyedi, M.; Shurvany, A. and Danehkar, A., 2008. Genetic variation of mangrove species Avicenia marina in Iran revealed by microsatellite markers. African Jornal of Biotechnology. Vol. 7, pp: 3017-3021.
52
Vincx, M., 1996. Meeiofauna in Marine and Freshwater Sediments. Universiteit Gent, Department of Morphology, Systematics and Ecology, Marine Biology Section, K.L. Ledeganckstraat 35, B-9000 Gent, Belgium.
53
Vranken, G.; Herman, P.M.J.; Vincx, M. and Heip, C., 1986. A re evaluation of marine nematode productivity. Hydrobiologia. Vol. 135, pp: 193-196.
54
Warwick, R.M., 1987. Meiofauna and Their Role in Marine Detrital Systems. Wetzel, R.G., Westlake, D.F., 1969. Periphyton. In: Vollenweider, R.A. (Ed.), A Manual on Methods for Measuring Primary Production in Aquatic Environments. Blackwell.
55
ORIGINAL_ARTICLE
ترکیب و فراوانی بی مهرگان کفزی در بخش پایینی رودخانه گرگانرود - استان گلستان
این مطالعه به منظور بررسی فروانی و پراکنش موجودات ماکروبنتیک به مدت یک سال به صورت ماهیانه از فرورین تا اسفند 1391در رودخانه گرگانرود در 3 ایستگاه شامل ایستگاه 1 (مختصات طول شرقی 42 ̍58˚36عرض شمالی ̍28 ̍00˚54 ) ، ایستگاه2(مختصات طول شرقی 41 ̍58˚36 عرض شمالی ̍27 ̍01˚54) و ایستگاه3 (مختصات طول شرقی 14 ̍59˚36 عرض شمالی 54 ̍02˚54) انجام گردید. برای نمونه برداری از دستگاه گراب ون وین با 3 تکرار استفاده گردید. در منطقه مورد مطالعه 6 راسته متعلق به 9 خانواده شاملLumbriculidae ، Tubificidae،Naididae ،Gammaridae ،Cardidae ،Nereididaae ،Ampharetidae، Chironomidae ،Balanidae شناسایی گردید. بیشترین درصد فراوانی موجودات ماکروبنتوز مربوط به Ampharetidae (28/62%)، Lumbriculidae (24/24%)، Naididae (11/3%)، Chironomidae (10/44%)، Balanidae (10/39%)، Gammaridae (6/14%)، Nereididae (31/91%)، Cardiidae (2/73%) و Tubificidae (2/19%) بود. به طور کلی در مجموع 3 ایستگاه بیش ترین تراکم ماکروبنتوزها مربوط به خانواده Ampharetidae (25410) و کم ترین تراکم مربوط به خانواده Tubificidae (1946) بود.
http://www.aejournal.ir/article_82933_4935cad5fe3c72f5c57ab382a243f74c.pdf
2018-09-23
397
404
ماکروبنتوز
تراکم
رودخانه گرگانرود
جنوب شرق دریای خزر
طاهر
پورصوفی
puorsuofi@yahoo.com
1
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، مرکز تحقیقات ذخایر آب های داخلی گرگان، گرگان، ایران
LEAD_AUTHOR
رحیم بردی
حق نیا
haghnia14@yahoo.com
2
سازمان حفاظت محیط زیست ایران، اداره کل حفاظت محیط زیست استان مازندران، اداره محیط زیست گلوگاه، گلوگاه، ایران
AUTHOR
آلتین
قجقی
altin.ghojoghi@gmail.com
3
گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، ایران
AUTHOR
احمدی، م.ر.، 1368. تحلیلی از طبقهبندی آبهای آلوده و اهمیت کاربردی آن. مجله منابع طبیعی دانشکده منابع طبیعی تهران. شماره 43، صفحات 1 تا 13.
1
باقریتوانی، م. و جمالزاده، ح.ر.، 1393. بررسی شاخصهای بومشناختی و زیستی ماکروبنتوزهای ناحیه مصبی رودخانه شیرود منتهی به دریای خزر. مجله علمی-پژوهشی زیستشناسی دریا. سال 6، شماره 23، صفحات 81 تا 96.
2
جلیلی، م.؛ نگارستان، ح. و صفاییان، ش.، 1389. بررسی فون ماکروبنتیک بخش جنوبغربی تالاب انزلی و ارتباط آنها با مواد آلی بستر. مجله اقیانوسشناسی. سال 1، شماره4، صفحات 11 تا 19.
3
رضایی،ک.؛ کیانی، س.؛ مقدم، م. و پهلوانی، س.، 1393. بررسی ساختار جوامع بنتیک رودخانه جاجرود بر پایه شاخصهای زیستی (منطقه خجیر). مجله علوم و مهندسی محیط زیست. سال 2، شماره 5، صفحات 77 تا 84.
4
سقلی، م.؛ باقراف، ر.؛ پاتیمار، ر.؛ حسینی، س.ع. و مختومی، ن.م.، 1391. پراکنش، فراوانی و توده زنده ماکروبنتوزهای خلیج گرگان و جنوبشرق دریای مازندران استان گلستان. پژوهشهای علوم و فنون دریایی. دوره 7 ، شماره 4، صفحات 46 تا 59.
5
شربتی، ص.؛ اکرمی، ر.؛ یلقی، ص.؛ میردار، ج. و احمدی، ز.، 1391. شناسایی، تعیین فراوانی و زیتوده جوامع ماکروبنتیک در آبهای ساحلی جنوبشرق دریای خزر (استان گلستان). مجله علمی شیلات ایران. سال 21، شماره 4، صفحات 23 تا 32.
6
طاهری، م.؛ سیفآبادی، ج. و یزدانیفشتمی، م.، 1386. بررسی اکولوژیکی و تغییرات سالانه جمعیت پرتاران خلیج گرگان ساحل بندرگز. مجله زیستشناسی ایران. جلد 20، شماره 2، صفحات 286 تا 294.
7
طاولی، م.؛ اسلامی، م. و مهدوی، س.م.، 1389. الگوی پراکنش و فراوانی مکانی و زمانی ماکروبنتوزهای سواحل جنوبی دریای خزر (ساحل شهرستان چالوس). مجله علمی شیلات ایران. سال 19، شماره 4، صفحات 147 تا 152.
8
فارسی، ا.؛ سیفآبادی، ج. و عوفی، ف.، 1392. تأثیر پارامترهای محیطی بر تراکم، بیوماس و تنوع ماکروبنتوزهای سواحل استان بوشهر. نشریه بهرهبرداری و پرورش آبزیان. جلد 2، شماره 1، صفحات 1 تا 11.
9
قاسماف، م.، 1984. بنتوزهای دریای سیاه و آزوف و نقش آنها در تولید بنتوزهای دریای خزر، ترجمه محمدرضا نوعی، 1371. مرکز تحقیقات شیلاتی گیلان. 23 صفحه.
10
قانع، ا.، 1392. ترکیب جمعیت ماکروبنتوزها و توسعه آبزیپروری در رودخانه زاینده رود. نشریه توسعه آبزیپروری. سال 7، شماره 4، صفحات 57 تا 65.
11
کوثری، س.؛ وثوقی، غ.؛ فارابی، م. و سلیمانی، ع.، 1388. مقایسه تراکم و زیتوده ماکروبنتوزهای دریای خزر در حوضه استان مازندران. مجله علمی شیلات ایران. شماره 2، صفحات 119 تا 128.
12
موسویکشکا، م.؛ سیفآبادی، ج.؛ عوفی، ف.؛ دلیرخواه، آ. و طاولی، م.، 1388. پراکنش و نوسانات فصلی کفزیان بزرگ خلیج گرگان (جنوبشرقی دریای خزر)، مجله زیستشناسی ایران. جلد 23، شماره 4، صفحات 605 تا 612.
13
موسویندوشن، ر.؛ سامانپژوه، م.؛ عمادی، ح. و فاطمی، س.م.ر.، 1390. ساختار جمعیت موجودات ماکروبنتوز در دریاچه نئور اردبیل. مجله علمی شیلات ایران. سال 20، شماره 3، صفحات 129 تا 142.
14
میردار، ج.؛ نیکویان، ع.؛ کرمی، م.؛ عوفی، ف. و ارشدی، ع.، 1387. بررسی تراکم، پراکنش و توده زنده موجودات ماکروبنتوز در خورهای شمالی استان بوشهر. مجله علمی شیلات ایران. سال 18، شماره 1، صفحات 125 تا 136.
15
نبوی، س.م.ب. و سواری، ا.، 1381. شاخصهای زیست محیطی بحران در خور موسی و رهیافتهای بهبود آنها. اولین همایش ملی بحرانهای زیست محیطی ایران و راهکارهای بهبود آنها. واحد علوم و تحقیقات مرکز اهواز. 12 صفحه.
16
Alipoor, V.; Rahimibashar, M.R. and Aliov, A.R., 2011. Temporal and spatial variability of macrofauna in a microtidal estuary (Sefid-Rood River Estuary, South of Caspian Sea). Research Journal of Fisheries and Hydrobiology. Vol. 6, pp: 432-435.
17
Brundine, I., 1951. The relation of O2 micro stratification of mud surface to the ecology of profundal bottom fauna. Report of Institute of Fresh Water Research. Vol. 32, pp: 8-12.
18
Cooper, C.M. and Knight, S.S., 1991. Water quality cycles in two hill land streams subjected to natural, municipal, and non-paint agricultural stresses in the Yazoo Basin of mississippi, USA (1985-1987). Verhandlungen des Internationalen Verein Limnologie. Vol. 24, pp: 1654-1663.
19
Gray, J.S., 1981. The ecology of marine sediments. Cambridge University press. Cambrige. 187 p.
20
Grzybkowska, M., 1989. Production estimates of the dominant of taxa Chironomidea (Diptera) in the modified, River Widawka and the natural, River Grabia, center Poland. Hydrobiologia. Vol. 179, pp: 245-249.
21
Hynes, K.E., 1998. Benthic Macroinvertebrate Diversity and Biotic Indices for Monitoring of 5Urban and Urbanizing Lakes within the Halifax Regional Municipality [HRM], Nova Scotia, Canada. Soil & Water Conservation Society of Metro Halifax.xiv. 114 p.
22
Jegadeesan, P. and Ayyakhannu, K., 1992. Seasonal variation of benthic fauna in marine zone of Coleroon estuary and inshore waters, South east Coast of Indian. Journal of. Marine Sciences. Vol. 21, pp: 67-69.
23
Lental, D., 1966. A biotic index for southeastern United Sataes, Derivation and list of tolerance values with criteria for assessing water quality ratings. JNABS. Vol. 12, pp: 179-290.
24
Paine, R.T., 1966. Food web complexity and species diversity. The American Naturalist. Vol. 100, No. 910,
25
pp: 65-75.
26
Rosenberg, D.M. and Resh, V.H., 1993. Introduction to Freshwater Biomonitoring and Benthic Macroinvertebrates. Chapman and Hall, New York. pp: 1-9.
27
Rosenberg, D.M., 1999. Protocols for Masuring Biodiversity: Benthic Macroinvertebrates in Freshwaters, Department of fisheries and Oceans, Freshwater Institute. Winnipeg, Manitoba. 42 p.
28
Row, G.T., 1971. Fertility of the sea (ed. J.D. Costlow) Gordon 7 breach. Science Publication NewYork, U.S.A. 12 P.
29
Seather, O.A., 1962. Larval overwintering in Endochironomus tendens Fabricius. Hydrobiologia. Vol. 20, pp: 377-381.
30
Sioli, H., 1975. Tropical rivers as expressions of their terrestrial environments. In: Golley, F.B., Medina, E. (Eds.). Tropical Ecological Systems. Springer Berlin Heidelberg. pp: 275-288.
31
Welcome, R.L., 1985. River Fisheries. FAO Fisheries Technical Report. Rome, Italy. pp: 87- 91.
32
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثرات فلز سنگین سرب بر تجمع زیستی و تخریب بافت های هپاتوپانکراس و عضلۀ میگوی رودخانه ای شرقی (Macrobrachium nipponense)
این پژوهش با هدف بررسی اثر فلز سنگین سرب بر رفتارهای زیستی، تجمعزیستی و تخریب بافتهای هپاتوپانکراس و عضلۀ میگوی رودخانهای شرقی (Macrobrachium nipponense)انجام گرفت. با توجه به مطالعات انجام شده و دامنة غلظتی ثبت شدة فلز سنگین سرب در رودخانههای منتهی به تالاب انزلی، تحقیق حاضر با چهار تیمار و سه تکرار انجام شد. در این تحقیق، یک تیمار شاهد (فاقد سرب) و سه تیمارِ فلز سنگین سرب با غلظتهای 5، 15 و 25 میلیگرم در لیتر در نظر گرفته شد و اثرات تحت استرسی تیمارها به مدت دو ماه بر میگوی رودخانهای شرقی مورد بررسی قرار گرفت. در طول تحقیق میگوها روزانه دو بار در حد استاندارد و به میزان اشتهاء با پلت غذادهی شدند. بر اساس نتایج بهدست آمده، در تیمارهای غلظتی سرب رفتارهای تولیدمثلی، پوستاندازی و جفتگیری میگوها متوقف گردید و با افزایش غلظت فلز سنگین سرب در تیمارها، میزان تجمعزیستی سرب در بافتهای هپاتوپانکراس و عضله بهطور معنیداری افزایش یافت (0/05>p). نتایج بافتشناسی نیز نشان داد که با افزایش غلظت فلز سنگین سرب در بافت هپاتوپانکراس باعث ایجاد ضایعات بافتی نظیر افزایش فضای بین سلولی، ایجاد لومنهای غیر عادی، ملانیزه شدن و بازسازی سلولهای هپاتوسیت و دفرمه شدن کلی بافت هپاتوپانکراس میگردد. هم چنین با افزایش غلظت فلز سنگین سرب در تیمارها، در بافت عضله نیز ضایعاتی نظیر موجی شکل شدن میوسینها (رشتههای عضلانی)، بدشکلی رشتههای عضلانی و ادغام رشتههای عضلانی شد. یافتههای این تحقیق نشان داد که فلز سنگین سرب از نظر رفتارهای زیستی، باعث اختلال در فعالیتهای تولیدمثلی، جفتگیری، پوست اندازی و رشد در میگوها شده و در سطح بدن نیز باعث بروز پاسخهای بافتی حاد میگردد که با توجه به آلودگی رودخانههای محل زیست این گونه (تالاب انزلی و رودخانههای منتهی به آن) به فلز سنگین سرب، مدیریت این اکوسیستمهای آبی و جلوگیری از ورود انواع فاضلابهای تصفیه نشده به این رودخانهها بسیار ضروری است.
http://www.aejournal.ir/article_82973_c2f11958ddf36a40f6d1456dc3717d3a.pdf
2018-09-23
405
412
سرب
میگوی رودخانه ای شرقی (Macrobrachium nipponense)
تجمع زیستی
هپاتوپانکراس
بهمن
پوریونس
bahman.pouryounes@ut.ac.ir
1
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
کامران
رضایی توابع
krtavabe@ut.ac.ir
2
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
LEAD_AUTHOR
غلامرضا
رفیعی
ghrafiee@ut.ac.ir
3
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
حمید
علاف نویریان
navi@guilan.ac.ir
4
گروه شیلات، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه گیلان، صومعه سرا، ایران
AUTHOR
اسود، س.ر.؛ اسماعیلیساری، ع. و ولینسب، ت.، 1392. سنجش و مقایسه غلظت کادمیوم در بافت عضله و هپاتوپانکراس ماهی مرکب ببری (Sepia pharaonis) و اسکوئید هندی (Uroteuthis duvauceli) خلیج فارس. مجلة پژوهش های جانوری (زیستشناسی ایران). سال 26، شمارة 3، صفحات 237 تا 244.
1
اقبالیشمسآباد، پ.؛ معماریانی، م. و معطر، ف.، 1389. بررسی عناصر سنگین کروم، کادمیوم، سرب و مواد آلی در سفیدرود با نگرشی بر منشا زمین ساختاری آنها. مجلة اکوبیولوژی تالاب (تالاب). دورة 2، شمارة 3، صفحات 39 تا 55.
2
پورباقر، ه.؛ حسینی، س.و.؛ خراسانی، ن.؛ حسینی، م. و دلفیه، پ.، 1393. مقدار فلزات سنگین در عضله میگوی سفید هندی (Fennerpenaeus indicus). مجلة شیلات، دورة 67، شمارة 1، صفحات 13 تا 24.
3
پوستی، ا.، 1368. بافتشناسی مقایسهای و هیستوتکنیک. انتشارات دانشگاه تهران. تهران. 519 صفحه.
4
خسروی، م.؛ بهرامیفر، ن. و قاسم پوری، س.م.، 1390. بررسی آلودگی فلزات سنگین (Zn، Hg، Pb، Cd و Cu) در رسوب سه بخش تالاب انزلی. مجلة سلامت و محیط زیست. دورة 4، شمارة 2، صفحات 223 تا 232.
5
دادالهیسهراب، ع.؛ نبوی، س.م. و خیرور ن.، 1387. ارتباط برخی مشخصات زیستسنجی با تجمع فلزات سنگین در بافت عضله و آبشش ماهی شیربت (Barbus grypus) در رودخانه اروندرود. مجلة علمی شیلات ایران. دورة 17، شمارة 4، صفحات 27 تا 34.
6
صادقی، م.س.؛ ابدالی، س.؛ دقوقی، ب.؛ مورکی، ن. و بهره مند، ب.، 1390. بررسی تجمع برخی فلزات سنگین (سرب، کادمیوم، نیکل) در بافتهای کبد و عضله ماهی حلواسیاه (Parastermateus niger) در آبهای استان هرمزگان (بندرعباس). مجلة زیست شناسی دریا (بیولوژی دریا). دورة 3، شمارة 10، صفحات 23 تا 28.
7
لکزایی، ف.؛ بابایی، ه. و خداپرست، س.ح.، 1394. سنجش فلزات سنگین (سرب، کادمیم، روی و مس) در بافت کبد و عضله ماهی کفال طلائی در دو منطقه حوضه جنوبغربی دریای خزر (کیاشهر و تالش). مجلة توسعه آبزیپروری. دورة 9، شمارة 3، صفحات 51 تا 58.
8
موحد، ع.؛ دهقان، ع.؛ حاجیحسینی، ر.؛ اکبرزاده، ص.؛ زنده بودی، ع.؛ نفیسیبهابادی، م.؛ حاجیان، ن.؛ پاکدل، ف.؛ حفظ اله، ع. و ایرانپور، د.، 1392. بررسی غلظت فلزات سنگین در بافت خوراکی میگوهای نمونهبرداری شده از آبهای سواحل استان بوشهر. دوماه نامه طب جنوب. دورة 16، شمارة 2، صفحات 100 تا 109.
9
Altindag, A. and Yagiti, S., 2005. Assessment of heavy metals concentrations in the food web of lake Beysehir, Turkey. Chemosphere. Vol. 60, pp: 522-556.
10
Blevins, R.D. and Pancorbo, O.C., 1986. Metal concentration in muscle of fish from aquatic system in east Tennessee, U.S.A, water. Water Research. Vol. 120, pp: 132-145.
11
Canli, M. and Atli, G., 2003. The relationships between heavy metal (Cd, Cr, Cu, Fe, Pb, Zn) levels and the size of six Mediterranean fish species. Environmental pollution. Vol. 121, pp: 129-136.
12
Dumont, H.J., 1998. The Caspian Lake: history, biota, structure, and function. Limnology and Oceanography. Vol. 43, pp: 44-52.
13
Golovanova, I.L., 2008. Effects of heavy metals on the physiological and biochemical status of fishes and aquatic invertebrates. Inland Water Biology. Vol. 1, pp: 93-98.
14
Gu, Y.G.; Wang, Z.H.; Lu, S.H.; Jiang, S.J.; Mu, D.H. and Shu, Y.H., 2012. Multivariate statistical and GIS-based approach to identify source of anthropogenic impacts on metallic elements in sediments from the mid Guangdong coasts, China. Environmental Pollution. Vol. 163, pp: 248-255.
15
Hashmi, M.I.; Mustafa, S. and Tariq, S.A., 2002. Heavy metal concentrations in water and tiger prawn (Penaeus monodon) from grow-out farms in Sabah, North Borneo. Food chemistry. Vol. 79, pp: 151-156.
16
Khan, M.A. and Abidi, S.F., 2007. Dietary isoleucine requirement of fingerling Indian major carp, Labeo rohita (Hamilton). Aquaculture nutrition. Vol. 13, pp: 424-430.
17
Lamanso, R.; Cheung, Y. and Chan, K.M., 1991. Metal concentration in the tissues of rabbitfish collected from Tolo Harbour in Hong kong. Marine Pollution Bulletin. Vol. 39, pp: 123-134.
18
Malakootian, M.; Yaghmaeian, K.; Meserghani, M.; Mahvi, AH. and Danesh Pajouh, M., 2011. Determination of Pb, Cd, Cr and Ni concentration in imported Indian rice to Iran. Iranian Journal of Health and Environment. Vol. 4, pp: 77-84.
19
Malferrari, D.; Brigatti, M.F.; Laurora, A. and Pini, S., 2009. Heavy metals in sediments from canals for water supplying and drainage: mobilization and control strategies. Journal of hazardous materials, Vol. 161, pp: 723-729.
20
Olgunoğlu, M.P.; Olgunoğlu, İ.A. and Bayhan, Y.K., 2015. Heavy Metal Concentrations (Cd, Pb, Cu, Zn, Fe) in Giant Red Shrimp (Aristaeomorpha foliacea Risso 1827) from the Mediterranean Sea. Polish Journal of Environmental Studies. Vol. 24, pp: 631-635.
21
Plette, A.C.; Nederlof, M.M.; Temminghoff, E.J. and Van Riemsdijk, W.H., 1999. Bioavailability of heavy metals in terrestrial and aquatic systems: a quantitative approach. Environmental Toxicology and Chemistry. Vol. 18, pp: 1882-1890.
22
Ribeiro, A.P.; Figueiredo, A.M.G.; dos Santos, J.O.; Dantas, E.; Cotrim, M.E.B.; Figueira, R.C.L.; Silva Filho, E.V. and Wasserman, J.C., 2013. Combined SEM/AVS and attenuation of concentration models for the assessment of bioavailability and mobility of metals in sediments of Sepetiba Bay (SE Brazil). Marine pollution bulletin. Vol. 68, pp: 55-63.
23
Shahriari, A., 2005. Determination of cadmium, chromium, lead and nickel in edible tissues of Tiger-Toothed Croaker and Russels snapper from Persian Gulf in 1382. Journal of Gorgan University of Medical Sciences. Vol. 2, pp: 65-67.
24
Shuhaimi-Othman, M.; Yakub, N.; Ramle, N.A. and Abas, A., 2011. Sensitivity of the freshwater prawn, Macrobrachium lanchesteri (Crustacea: Decapoda), to heavy metals. Toxicology and Industrial Health. Vol. 27, pp: 523-530.
25
Simopoulos, A., 1997. Nutritional aspects of fish and integrated approach to quality. Sea food. Vol. 12, pp: 589-607.
26
Teuchies, J.; De Jonge, M.; Meire, P.; Blust, R. and Bervoets, L., 2012. Can acid volatile sulfides (AVS) influence metal concentrations in the macrophyte Myriophyllum aquaticum? Environmental science and technology. Vol. 46, pp: 9129-9137.
27
UNEP. 1999. Chemical program. Global Mercury Assessment Report. 221 p.
28
ORIGINAL_ARTICLE
زیستشناسی تولیدمثل میگو خنجری Parapenaeopsis stylifera ( H. Milne Edwards, 1837) در آب های سواحل غربی استان هرمزگان
این مطالعه با هدف بررسی برخی جنبه های تولیدمثلی میگو خنجریParapenaeopsis stylifera در آبهای ساحلی غرب استان هرمزگان انجام شد. نمونهبرداری از صید مشتاهای منطقه خمیر انجام شد و در مجموع 835 میگو شامل462 میگوی ماده و 373 میگوی نر مورد زیستسنجی قرار گرفت. نتایج این بررسی نشان داد که نسبتهایجنسی نر: ماده بهصورت سالانه بهطور معنیداری 1:1 نبود و جمعیت غالب در اکثر ماههای سال مادهها بودند ( با 55/3%). بررسی درصد رسیدگی تخمدان میگوها نشان داد که فراوانی میگوهای نابالغ (مرحله 1 و بهویژه مرحله 2 رسیدگی تخمدان) در تمامی طول سال بسیار چشمگیر بوده و نشاندهنده حضور قابل توجه میگوهای جوان این گونه در منطقه میباشد.همچنین بررسی دقیقتر این گستره نشان داد که اگرچه حضور میگوهای بالغ (مراحل 3 تا 5 رسیدگی) نیز در تمام طول سال مشاهده میشود اما حضور آنها در طی ماههای اسفند تا خردادماه وآبان تا دی ماه چشمگیرتر بوده است. میزان شاخص گنادوسوماتیک (GSI) جنس ماده از اسفند تا اردیبهشت دارای روند صعودی و اوج آن در اردیبهشت ماه مشاهد شد و در فصل تابستان از روند نزولی برخوردار بود. همچنین طول کاراپاس در 50 درصد بلوغ (50%LM) برای میگوهای ماده برابر 18/8 میلیمتر برآورد شد.
http://www.aejournal.ir/article_82974_ef7a30ec665b887ceec382b3643d2782.pdf
2018-09-23
413
418
میگو خنجری
نسبت جنسی
فصل تخم ریزی
50%LM
شاخص گنادو سوماتیک
خلیج فارس
میترا
غفوریان
m.ghaforian.325@gmail.com
1
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی و جوی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، صندوق پستی: 3995
AUTHOR
محسن
صفائی
msn_safaie@yahoo.com
2
گروه شیلات، پژوهشکده منطقه ای جنگل های حرا، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، صندوق پستی: 3995
LEAD_AUTHOR
فرشته
سراجی
saraji20042000@yahoo.com
3
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، بندرعباس، صندوق پستی: 1597- 79145
AUTHOR
صفائی، م.؛ بارانی، م.؛ مومنی، م.؛ کامرانی، ا. و محبی، پ.، 1390. بررسی برخی از ویژگیهای تولیدمثل میگوهای غالب در منطقه مشرف به جنگلهای حرا واقع در شمالغربی جزیره قشم (منطقه چاهوشرقی). فصلنامه بومشناسی. دوره 1، شماره 3، صفحات 38 تا 48.
1
صفائی، م. و کامرانی، ا.، 1388. معرفی میگوهای خانواده پنائیده در آبهای ساحلی استان هرمزگان. فصلنامه پژوهشهای دریایی. دوره 1، شماره 1، صفحات 18 تا 22.
2
صفائی، م.، 1391. پویاییشناسی جمعیت میگوهای غالب در منطقه شمالغربی جزیره قشم. مجله علمی شیلات ایران. شماره 3، صفحات 85 تا 98.
3
صفائی، م.، 1387. مطالعه بافتشناسی میگو سفید (Metapenaeus affinis) در آبهای ساحلی خلیج فارس و دریای عمان (استان هرمزگان). پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. شماره 81، صفحات 169 تا 171.
4
صفائی،م.،1384. پویاییشناسی میگو موزی (Penaeus merguiensis) در آبهای ساحلی هرمزگان. فصلنامه علمی پژوهشی وزارت جهادکشاورزی. شماره 67، صفحات 50 تا 61.
5
صفائی، م.،1384. بررسی بعضی از خصوصیات تولیدمثلی میگوی موزی (Penaeus merguiensis) در آبهای ساحلی استان هرمزگان. فصلنامه علمی پژوهشی وزارت جهادکشاورزی. جلد 17، شماره 4، صفحات 50 تا61.
6
صفائی، م. و کامرانی، ا.، 1382. پویاییشناسی جمعیت میگوی سفید Metapenaeus affinis در آبهای ساحلی استان هرمزگان. مجله علوم دریایی ایران. دوره 2، شمارههای 2و3، صفحات 39 تا 49.
7
مومنی، م.؛ سالارپوری، ع.؛ بهزادی، س؛ درویشی، م.؛ خواجه نوری، ک؛ دقوقی، ب؛ کیمرام، ف. و صفایی، م.، 1394. ارزیابی ذخایر میگو موزی در آبهای ساحلی استان هرمزگان. موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان. 59 صفحه.
8
مومنی، م.؛ سالارپور، ع.؛ درویشی، م.؛ بهزادی، س.؛ خواجه نوری، ک. و صادقی، م.ر.، 1391. بررسی و تعیین الگوی بهره برداری مناسب ذخائر میگو موزی در آبهای استان هرمزگان (خلیج فارس و دریای عمان). موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور. پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان. 48 صفحه.
9
کامرانی، ا.؛ امیری، ب. و صفائی، م.، 1383. زیستشناسی تولیدمثل میگوی سفید (سرتیز) Metapenaeus affinis در آبهای ساحلی استان هرمزگان. مجله علمی شیلات ایران. شماره 4، صفحات 151 تا 160.
10
نیکخواهخواجهعطایی، ش.؛ سورینژاد، ا.؛ کامرانی، ا.؛ فدونی شجاعی، م.؛ شهسواری، م. و اسدی، م.، 1391. زیستشناسی تولیدمثل ماهی شانک زرد باله Acanthopagrus latus در آبهای ساحلی هرمزگان. مجله بومشناسی آبزیان. شماره 2، دوره 2، صفحات 56 تا 67.
11
Fischer, W. and Bianchi, G., 1984. FAO species identification sheets for purposes shrimps/prawns. F.A.O document. Vol. 5.
12
King, M., 1995. Fisheries biology. Assessment and management. Oxford, UK, Fishing News Books. Blackwell Science Ltd. 342 p.
13
Lim, L.C.; Heng, H.H. and Cheong, L., 1987. Manual on breeding of banan prawn Fisheries Hand book No.3. Primary production Department Ministry of NationaL Development Republic of Singapore. Malaysia. 62 p.
14
Primavera. J.H., 1985. Brood stock of sugpo penaeus monodon. Aquaculture Deparment Southeast Asian.
15
Fisheries development center. 2015. Fabricus. Tigbaun. Hoilo. Philippines, Extension Manual no.7. Third Edition.
16
Menon, M.K., 1952. Notes on the bionomios and fishery of the prawn Parapenaeopsis stylifera (M.Edw) on the Malabar coast, Journal Zoology soc India. Vol. 1, No. 5, pp: 153-162.
17
Quinn, N.J. and Kojis, B.L., 1987. Reproductive Biology of Scylla spp. (Crustacea: Portunidae) from the Labu Estuary in Papua New Guinea. Bull. Mar. Sci. Vol. 41, No. 2, pp: 234-241.
18
Rao, P.V., 1970. Synopsis of biological data the penaeid prawn Parapenaeopsis stylifera (H. Milne Edwards, 1837). FAO fisherie reports. Vol. 57, No. 4, pp: 1575-1605.
19
Safaie, M., 2017. Population dynamics of kiddy shrimp, Parapenaeopsis stylifera (H. Milne Edwards, 1837) in the north-west of Qeshm Island. Iran. Tropical Zoology.
20
Safaie, M., 2015. Population dynamics for banana prawns Penaeus merguiensis de Man, 1888 in coastal waters off the northern part of the Persian Gulf, Iran, Tropical zoology. DOL10.1080/0394675. 1006459.
21
Sarada, P.T., 2002. Biology and population dynamics of Parapenaeopsis stylifera at Calicut. Indian. Journal Fish. Vol. 49, No. 4, pp: 351-360.
22
Sunil, V. and Suryanarayanan, H., 2002. Breeding biology of shrimp Parapenaeopsis stylifera (Milne Edward) coast of India. Indian Journal of marine sciences. Vol. 31, No. 1, pp: 78-80.
23
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی اثر مخمر ساکارومایسیس سروزیه به عنوان محرک سیستم ایمنی در میگوی پا سفید غربی (Litopenaeus vannamei)
این تحقیق جهت بررسی فاکتورهای ایمنی و میزان بقای میگوی پاسفید غربی تغذیه شده با مخمر ساکارومایسیس سروزیه در مقایسه با میگوهایی که از مخمر استفاده نکردهاند انجام گردید. در این مطالعه میزان بازماندگی و فاکتورهای ایمنی میگوهای تغذیهشده با مخمر ساکارومیسس سرویزیه در مقایسه با تیمار شاهد مورد مقایسه و بررسی قرار گرفت. بدین منظور تعداد 300 قطعه میگو با وزن متوسط 30 تا 35 گرم از یک استخر پرورش میگوی چوئبده آبادان انتخاب گردید و پس ازاطمینان از سلامتی، عملیات آداپتاسیون انجام شد. میگوها به 2 گروه (تیمار) 150 قطعهای (شامل 50 قطعه میگو در سه تکرار) شامل یک گروه تغذیه شده با غذای معمولی و یک گروه تغذیه شده با غذای حاوی مخمر تقسیم بندی شدند. سپس تغییرات فاکتورهای ایمنی و میزان بقا در دو گروه محاسبه و بررسی گردیدند. نتایج نشان داد که میزان بقاء نسبی در دو تیمار تفاوت معنی داری نداشتند. ولی فاکتورهای ایمنی (THC,TPP,PO,POD و SOD ) در تیمار تغذیه شده با مخمر نسبت به تیمار شاهد افزایش معنی داری نشان داد(0/05>P). در بحث کلی به نظر می رسد که مصرف مخمر ساکارومایسیس سروزیه سبب بهبود سیستم ایمنی میگو شده است.
http://www.aejournal.ir/article_82975_184a1d91f9e2d5ae55a8d8278074256d.pdf
2018-09-23
419
426
میگو سفید غربی
مخمر ساکارومایسیس سروزیه
میزان بقا
فاکتورهای ایمنی
مینا
آهنگرزاده
m.ahangarzadeh@yahoo.com
1
پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران
LEAD_AUTHOR
مهرداد
محمدی دوست
mmohammadidoust@yahoo.com
2
پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران
AUTHOR
حسین
هوشمند
houshmand_h@yahoo.com
3
پژوهشکده آبزی پروری جنوب کشور، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، اهواز، ایران
AUTHOR
محمد
افشارنسب
mafsharnasab@yahoo.com
4
بخش بهداشت و بیماری های آبزیان، دانشکده علوم تخصصی دامپزشکی، واحد علوم تحقیقات، دانشگاه آزاد اسلامی، تهران، ایران
AUTHOR
سیدرضا
سیدمرتضایی
rmortezaei@yahoo.com
5
مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، تهران، ایران
AUTHOR
افشارنسب، م.؛ محمدیدوست، م.؛ قوامپور، ع.؛ متینفر، ع. و سیدمرتضایی، س.، 1385. احیاء پرورش میگو در سایت چوئبده آبادان با رعایت اصول بهداشتی. موسسه تحقیقات شیلات ایران.
1
سالنامه آماری شیلات. 1392. سازمان شیلات ایران، مدیریت طرح و برنامه.
2
Bai, N.;GU, M.; Zhang, W.; Xu, W. and Mai, K., 2014. Effects of β-glucan derivatives on the immunity of white shrimp Litopenaeus vannamei and its resistance against white spot syndrome virus infection. Aquaculture. Vol. 426, pp: 66-73.
3
Bradford, M.M., 1976. A rapid and sensitive method for the quantification of microgram quantities of protein utilizing protein–dye binding. Anal Biochem. Vol. 72, pp: 248-254.
4
Cerenius, L. and Söderhäll, K., 2004. The prophenoloxidase-activating system in invertebrates. Immunological Reviews. Vol. 198, pp: 116-126.
5
Chang, C.F.; Su, M.S.; Chen, H.Y. and Liao, I.C., 2003. Dietary beta-1,3-glucan effectively improves immunity and survival of Penaeus monodon challenged with white spot syndrome virus. Fish and Shellfish Immunology.Vol. 15, pp: 297-310.
6
Chen, Y.Y.; Chen, J.C.; Lin, Y.C.; Kitikiew, S.; Li, H.F.; Bai, J.C.; Tseng, K.C.; Lin, B.W.; Liu, P.C.; Shi, Y.Z.; Kuo, Y.H. and Chang, Y.H., 2014. Endogenous molecules induced by a pathogen-associated molecular pattern (PAMP) elicit innate immunity in shrimp. PLoS One. Vol. 9, No. 12.
7
Ebrahim, M. and Abou-Seif, R., 2008. Fish meal replacement by yeast protein (Saccharomyces cerevisiae) supplemented with biogenic L-carintine as a source of methionine plus lysine mixture in feed for Nile tilapia (Oreochromis niloticus) fingerlings. 8th international symposium on Tilapia in aquaculture. Central Laboratory for Aquaculture Research, Agriculture Research Center, Cairo, Egypt.
8
El-Banna, S. and Atallah, S., 2009. Study the Role of Feed Additives in Prevention of Fish Diseases Incidence in Oreochromis niloticus and Common Carp Fish and Its Economic Importance. Journal of the Arabian Aquaculture Society. Vol. 4, No. 2, pp: 121-140.
9
FAO Fisheries Department. State of world Aquaculture. 2012. FAO Fisheries Technical Paper.
10
Rome. 209 p.
11
He, W.; Cui, J.; Yue, Y.; Zhang, X.; Xia, X.; Liu, H. and Lui, S., 2011. High-performance TiO 2 from Baker’s yeast. Journal of colloid and interface science.Vol. 354, pp: 109-115.
12
Huang, J.; Yang, Y. and Wang, A., 2010. Reconsideration of phenoloxidase activity determination in white shrimp Litopenaeus vannamei. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 28, pp: 240-244.
13
Jiang, G.; Yu R. and Zhou M., 2004. Modulatory effects of Ammonia-N on the immune system of Penaeus japonicas to virulence of white spot syndrome virus. Aquaculture. Vol. 241, pp: 61-75.
14
Kafilzadeh, F.; Farhangdoost, M.S. and Tahery, Y., 2013. Isolation and identification of phenol degrading bacteria from Lake Parishan and their growth kinetic assay. African Journal of Biotechnology. Vol. 9, pp: 6721-6726.
15
Kakoolaki, S.; Sharifpour, I.; Soltani, M.; Ebrahimzadeh Mousavi, H.; Mirzargar, S. and Rostami, M., 2010. Selected morpho-chemical features of hemocytes in farmed shrimp, Fenneropenaeus indicus in Iran. Iranian Journal of Fisheries Sciences. Vol. 9, pp: 219-232.
16
Kumar, S.; Ahamed, V.; Sarathi, M.; Basha, A. and Hameed, A., 2008. Immunological responses of Penaeus monodon to DNA vaccine and its efficacy to protect shrimp against white spot syndrome virus (WSSV). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 24, pp: 467-478.
17
Lara-Flores, M.; Olvera-Novoa, M.A.; Guzmán-Méndez, B.Z.E. and López-Madrid, W., 2003. Use of the bacteria Streptococcus faecium and Lactobacillus acidophilus, and the yeast Saccharomyces cerevisiae as growth promoters in Nile tilapia (Oreochromis niloticus). Aquaculture. Vol. 216, pp: 193-201.
18
Le moullac, G. and Haffner, P., 2000. Environmental factors affecting immune responses in Crustacea. Aquaculture. Vol. 191, pp: 121-131.
19
Lightner, D.V.; Redman, R.M.; Hasson, K.W. and Pantoja, C.R., 1995. Taura syndrome in Penaeus vannamei (Crustacea: Decapoda): gross signs, histopathology and ultrastructure. Dis. Aquat. Org. Vol. 21, pp: 53-59.
20
Lin, Y.C.; Yeh, S.T.; Li, C.C.; Chen, L.L.; Cheng, A.C. and Chen, J.C., 2011. An immersion of Gracilaria tenuistipitata extract improves the immunity and survival of white shrimp Litopenaeus vannamei challenged with white spot syndrome virus. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 31, pp: 1239-1246.
21
Liu, Y.; Jang, X.L.; Lv, Q. and Guan, H.S., 2000. Effects of mannuronate polysaccharide on enzymes of Penaeus chinensis related with immune and hemolysis. Journal of Fisheries of China. Vol. 24, pp: 549-553.
22
Lorenzo, S.; De Guarrini, S.; Smith, V.J. and Ferrero, E.A., 1999. Effects of LPS injection on circulating haemocytes in crustaceans in vivo. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 9, pp: 31-50.
23
Pacheco, R.; Ascencio, F.; Zarain, M.; Gomez, G. and Campa, A., 2011. Enhancement of superoxide dismutase and catalase activity in juvenile brown shrimp, Farfantepenaeus californiensis (Holmes, 1900), fed β-1.3 glucan vitamin E, and β-carotene and infected with white spot syndrome virus. Lat. Am. J. Aquat. Res. Vol. 39, pp: 534-543.
24
Subramanian, S. and Philips, R., 2013. Identification of haematological markers in shrimp health assessment from the immune profile of Fenneropenaeus indicus on b-1,3-glucan administration and white spot syndrome virus challenge. Aquacult Int. Vol. 21, pp: 1169-1184.
25
Takahashi, Y.; Kondo, M.; Itami, T.; Honda, T.; Inagawa, H.; Nishizawa, T.; Soma, G.I. and Yokomizo, Y., 2000. Enhancement of disease resistance against penaeid acute viraemia and induction of virus-inactivating activity in haemolymph of kuruma shrimp, Penaeus japonicus, by oral administration of Pantoea agglomerans lipopolysaccharide (LPS). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 10, pp: 555-558.
26
Tewary, P. and Patra, B., 2011. Oral administration of baker’s yeast. Saccharomyces cerevisiae. pp: 1-7.
27
Valderrama, D. and Anderson, J.L., 2011. Shrimp production review. Food and Resource Economics Department, University of Florida, USA. Santiago, Chile. November, pp: 6-9.
28
Van De Braak, C.B.T., 2002. Haemocytic defence in black tiger shrimp (Penaeus monodon). PhD thesis, Wageningen University, Wageningen Institute of Animal Sciences. POBox 338, 6700 AH Wageningen, the Netherlands. pp: 168.
29
Wang, F. I. & Chen, J. C., 2006. Effect of salinity on the immune response of tiger shrimp Penaeus monodon and its susceptibility to Photobacterium damselae subsp. damselae. Fish Shellfish Immunol. Vol. 20, pp: 671-681.
30
Wen-Ying, S.; Hui-Jun, Y.; Hui-Feng, K.E. and Lan, Q.I., 2007. Effect of β-glucan on Enzyme Activity of Immunity in Pacific White Leg Shrimp Litopenaeus vannmei. Fisheries Science. 7 p.
31
Yoganandhan, K.; Thirupathi, S. and Sahul Hameed, A.S., 2003b. Biochemical, physiological and hematological changes in white spot syndrome virus-infected shrimp, Penaeus indicus. Aquaculture. Vol. 221, pp: 1-11.
32
ORIGINAL_ARTICLE
رابطه مراحل زیستی (ناپلیوس، کوپهپودیت و بلوغ) Acartia tonsa با شاخصه های فیزیکوشیمیایی و پلانکتون های غالب سواحل مازندران طی فصل تابستان (یک رویکرد مدلسازی)
پراکنش مکانی مراحل زیستی Acartia tonsa(ناپلیوس، کوپهپودیت و بلوغ) و رابطه آن با شاخصههای فیزیکوشیمیایی، فیتوپلانکتونها و زئوپلانکتونهای غالب در سواحل مازندران طی فصل تابستان با استفاده از مدلRandom Forest بررسی گردید. نمونهبرداری ماهانه در سال 1391 در امتداد چهار خط عمود بر ساحل (امیرآباد، بابلسر، نوشهر و رامسر) در لایههای مختلف ستون آب در اعماق 5، 10، 20 و 50 متر انجام شد. نتایج نشان داد که متوسط تراکم کل این گونه 1586 عدد در مترمکعب بود. پراکنش مکانی مراحل زیستی این گونه بیانگر روند کاهش تراکم بهترتیب در رامسر، امیرآباد، بابلسر و نوشهر بود. همچنین، با دور شدن از ساحل و با افزایش عمق، تراکم هر کدام از مراحل زیستی A. tonsaکاهش یافت. تحلیل دادهها در محیط R و با استفاده از مدل RF نشاندهنده عملکرد مطلوب این مدل برای شناسایی مهمترین عوامل اثرگذار برای پراکنش مراحل ناپلیوس، کوپهپودیت و بلوغ A. tonsa(با دقت 97 درصد) بود. بر این اساس مشخص شده است که مرحله لاروی A. tonsa رابطه مشهودی با مرحله کوپهپودیت و بلوغ خود، دما، فسفات، کدورت و مرحله لاروی شانهدار M. leidyiداشت. بهعلاوه یک رابطه نزدیکی بین مرحله کوپهپودیت با مراحل ناپلیوس و بلوغ خود، دما، مرحله لاروی شانهدار M. leidyi، نیتریت و کدورت پیدا شد، درحالیکه مرحله بلوغ این گونه نیز رابطه نزدیکی با مرحله کوپهپودیت خود، مرحله لاروی شانهدار M. leidyi، نیتریت، دما، شوری و اکسیژن داشت.
http://www.aejournal.ir/article_82997_6e00637a14065e7642055d6a9535a936.pdf
2018-09-23
427
434
پراکنش مراحل زیستی Acartia tonsa
ساحل مازندران
دریای خزر
Random forest
مدل ساختار پایه درختی
زهرا
بابایی
zahara.babaei@gmail.com
1
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران، کدپستی: 4641776489
AUTHOR
نعمت
محمودی
mahmoudi.nemat@gmail.com
2
گروه تکثیر و پرورش آبزیان، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران، کد پستی: 4641776489
LEAD_AUTHOR
جعفر
سیف آبادی
jseyfabadi@gmail.com
3
گروه بیولوژی دریا، دانشکده علوم دریایی، دانشگاه تربیت مدرس، نور، ایران، کدپستی: 4641776489
AUTHOR
اسماعیلیفریدونی، ا.؛ سیفآبادی، ج.، جوانشیرخوئی، آ. و عابدیانکناری، ع.، 1383. تاثیر کیفی غذا بر همآوری و تولید پلت مدفوعی پاروپای Acartia clausi دریای خزر. مجله علوم وفنون دریایی ایران. دوره 3، شماره 2و 3، صفحات 1 تا 14.
1
روحی، ا.؛ آذری، ر.؛ شاپوری، م. و نادریجلودار، م.، 1394. بررسی چرخه زندگی کوپه پود Acartia tonsa تحت تیمارهای دمایی و شوری مختلف آب حوزه جنوبی دریای خزر. مجله اقیانوس شناسی. دوره 6، شماره 23، صفحات 49 تا 54.
2
روشنطبری، م.؛ نجاتخواه، پ.؛ حسینی، سع.؛ خداپرست، ن. و رستمیان، م.ت.، 1386. تنوع، تراکم و پراکنش زئوپلانکتون حوزه جنوبی دریای خزر در زمستان 1384 و مقایسه آن با سالهای قبل، فصلنامه علوم و تکنولوژی محیط زیست. دوره 9، شماره 4، صفحات 129 تا 138.
3
محمودی، ن.، 1393. روابط متقابل جوامع پلانکتونی با تاکید بر شانهدار Mnemiopsis leidyi در سواحل مازندران. رساله دکتری، دانشگاه تربیت مدرس.
4
Abrantes, N.; Antunes, S.C.; Pereira, M.J. and Gonçalves, F., 2006. Seasonal succession of cladocerans and phytoplankton and their interactions in a shallow eutrophic lake (LakeVela, Portugal). Journal of Acta Oecologica.
5
Vol. 29, pp: 54-64.
6
Breiman, L.; Friedman, J.H.; Olshen, R.A. and Stone, C.J., 1984. Classification and regression trees. Wadsworth International Group, Belmont. 368 p.
7
Burian, A.; Schagerl, M. and Yasindi, A., 2013. Microzooplankton feeding behaviour: grazing on the microbial and the classical food web of African soda lakes. Hydrobiologia. Vol. 710, pp: 61-72.
8
Daan, R.; Gonzalez, S.R. and Klein Breteler, W.C.M., 1988. Cannibalism in omnivorous calanoid copepods. Marine ecology progress series. Oldendorf. Vol. 47, No. 1, pp: 45-54.
9
Davis, T.W.; Koch, F.; Marcoval, M.A.; Wilhelm, S.W. and Gobler, C.J., 2012. Mesozooplankton and microzooplankton grazing during cyanobacterial blooms in the western basin of Lake Erie. Harmful Algae. Vol. 15, pp: 26-35.
10
De’ath, G. and Fabricius, K.E., 2000. Classification and regression trees: a powerful yet simple technique for ecological data analysis, Ecology. Vol. 81, No. 11, pp: 3178-3192.
11
Elliott, D.T. and Tang, K.W., 2011. Influence of carcass abundance on estimates of mortality and assessment of population dynamics in Acartia tonsa. Marine Ecology Progress Series. Vol. 427, pp: 1-12.
12
Drillet, G.; Maguet, R.; Mahjoub, M.S.; Roullier, F. and Fielding, M. J., 2014. Egg cannibalism in Acartia tonsa: effects of stocking density, algal concentration, and egg availability. Aquaculture international. Vol. 22, No. 4, pp: 1295-1306.
13
Hagemann, A.; Øie, G.; Evjemo, J.O. and Olsen, Y., 2016. Effects of light and short-term temperature elevation on the 48-h hatching success of cold-stored Acartia tonsa Dana eggs, Journal of Aquaculture International. Vol. 24, No. 1, pp: 57-68.
14
Holste, L. and Peck, M.A., 2006. The effects of temperature and salinity on egg production and hatching success of Baltic Acartia tonsa (Copepoda: Calanoida): a laboratory investigation. Marine Biology. Vol. 148, No. 5,
15
pp: 1061-1070.
16
Jamshidi, S.; Bakar, A. and Noordin, M. 2010., Temperature, Salinity and Density Measurements in the Coastal Waters of the Rudsar, South Caspian Sea. Journal of the Persian Gulf. Vol. 1, No. 1, pp: 27-36.
17
Knudby, A.; Brenning, A. and LeDrew, E. 2010., New approaches to modelling fish–habitat relationships. Journal of Ecological Modelling. Vol. 221, pp: 503-511.
18
Leandro, S.M.; Tiselius, P. and Queiroga, H., 2006. Growth and development of nauplii and copepodites of the estuarine copepod Acartia tonsa from southern Europe (Ria de Aveiro, Portugal) under saturating food conditions. Journal of Marine Biology. Vol. 150, No. 1, pp: 121-129.
19
Meunier, C.L.; Boersma, M.; Wiltshire, K.H. and Malzahn, A.M., 2016. Zooplankton eat what they need: copepod selective feeding and potential consequences for marine systems. Journal of Oikos. Vol. 125, No. 1, pp: 50-58.
20
Reynolds, C.S., 2006. The ecology of phytoplankton. Cambridge University Press.
21
Roohi, A.; Pourgholam, R.; Ganjian Khenari, A.; Kideys, A.; Sajjadi, A. and Abdollahzade Kalantari, R., 2013, Factors Influencing the Invasion of the Alien Ctenophore Mnemiopsis leidyi Development in the Southern Caspian Sea. Journal of Ecopersia. Vol. 1, No. 3, pp: 299-313.
22
Saiz, E. and Kiørboe, T., 1995. Predatory and suspension feeding of the copepod Acartia tonsa in turbulent environments. Marine Ecology-Progress Series. Vol. 122, No. 1-3, pp: 147-158.
23
Shiganova, T.A.; Sapozhnikov, V.V.; Musaeva. E.I.; Domanov. M.M.; Bulgakova, Y.V.; Belov, A.A.; Zazulya, N.I.; Zernova, V.V.; Kuleshov, A.F.; Sokol-skii, A.F.; Imirbaeva, R.I. and Mikuiza A.S., 2003. Factors determining the conditions of distribution and quantitative characteristics of the ctenophore Mnemiopsis leidyi in the North Caspian. Oceanology. Vol. 43, pp: 676-693.
24
Shipman, K., 2015. Measuring Cannibalism Rates in the Zooplankton Copepod Species, Acartia tonsa.
25
Swadling, K.M. and Marcus, N.H., 1994. Selectivity in the natural diets of Acartia tonsa Dana (Copepoda: Calanoida): Comparison of juveniles and adults, Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 181, No. 1, pp: 91-103.
26
Takahashi, K. and Tiselius, P., 2005. Ontogenetic change of foraging behaviour during copepodite development of Acartia clausi. Marine Ecology Progress Series. Vol. 303, pp: 213-223.
27
Teixeira, P.F.; Kaminski, S.M.; Avila, T.R.; Cardozo, A.P.; Bersano, J.G. and Bianchini, A., 2010. Diet influence on egg production of the copepod Acartia tonsa (Dana, 1896). Anais da Academia Brasileira de Ciências. Vol. 82, No. 2, pp: 333-339.
28
White, J.R. and Roman, M.R., 1992. Egg production by the calanoid copepod Acartia tonsa in the mesohaline Chesapeake Bay: the importance of food resources and temperature. Marine Ecology-Progress Series. Vol. 86, pp: 239-239.
29
Zuur A.F.; Ieno E.N. and Elphick C.S., 2010. A protocol for data exploration to avoid common statistical problems. Journal of Methods in Ecology and Evolution. Vol. 1, pp: 3-14.
30
ORIGINAL_ARTICLE
تنوع گونهای سنهای آفت (Heteroptera: Pentatomoidea) مزارع گندم ورامین و تغییرات جمعیت سن گندم (Eurygaster integriceps Puton)
تنوع گونهای سنهای دو خانواده Pentatomidae و Scutelleridae در مزارع گندم مناطق مختلف ورامین طی سالهای 1392 و 1393 مورد بررسی قرار گرفت و در مجموع 9 گونه سن جمعآوری گردیدند. سنهای جمعآوری شده در این پژوهش عبارتند از: Eurygaster integriceps (Puton, 1881)، Odontotarsus impictus Jakovlev, 1886 وAncyrosoma leucogrammes (Gmelin, 1789) از خانواده Scutelleridae،Graphosoma (Graphosoma) lineatum lineatum (Linnaeus, 1758)، Aelia acuminata (Linnaeus, 1758)، Aelia melanota Fieber, 1886، Eurydema (Eurydema) ornata (Linnaeus, 1758)، Eurydema putoni (Jakovlev, 1877)وDolycoris baccarum (Linnaeus, 1758) از خانواده Pentatomidae. نمونهبرداریهایی بهمنظور تعیین زمان ظهور سن مادر و نیز مطالعه تغییرات جمعیت مراحل مختلف زیستی سن گندم در پنج منطقه ورامین شامل قرچک، عسگرآباد، دهماسین، جوادآباد و پیشوا انجام گرفت. نتایج نمونهبرداریها در مناطق مختلف نشان داد که زمان ظهور سن مادر در تمام مناطق مزبور از اواخر اسفند تا اوایل فروردین میباشد و زمان اوج آن در اغلب مناطق از اواخر فروردین تا اوایل اردیبهشت است. براساس دستاوردهای این پژوهش که شامل تعیین زمان ظهور و اوج تراکم جمعیت سن گندم در منطقه ورامین میباشد، ضمن حمایت از دشمنان طبیعی، زمان مناسب جهت رهاسازی پارازیتوئیدهای پرورش یافته و یا استفاده از سایر عوامل کنترل مانند آفتکشهای کم خطر در قالب مدیریت تلفیقی آفت فراهم میگردد.
http://www.aejournal.ir/article_83080_afd97c958015a81131f96ff69e0365dc.pdf
2018-09-23
435
444
سن گندم
تغییرات جمعیت
ورامین
Pentatomidae
Scutelleridae
حسن
قهاری
hghahari@yahoo.com
1
گروه گیاهپزشکی دانشگاه آزاد اسلامی واحد یادگار امام خمینی (ره) شهرری، ایران
LEAD_AUTHOR
ایرانیپور، ش.، 1375. بررسی تغییرات فصلی جمعیت زنبورهای پارازیتوئید سن گندم Eurygaster integriceps Put. (Heteroptera: Scutelleridae) در کرج، کمالآباد و فشند. پایاننامه کارشناسی ارشد دانشکده کشاورزی دانشگاه تهران. 187 صفحه.
1
تفقدینیا، ب.، 1373. بررسی دینامیسم جمعیت سن گندم (Eurygaster integriceps Put.) در منطقهکرج. پایاننامه کارشناسی ارشد حشرهشناسی دانشگاه تهران. 62 صفحه.
2
ثمین، ن.؛ شجاعی، م.؛ عسگری، ش.؛ قهاری، ح. و خدام، ح.، 1390. تغییرات جمعیت سن گندم، Eurygaster integriceps (Hemiptera: Scutelleridae) در مزارع گندم و جو و معرفی پارازیتوئیدهای مهم آن در پناهگاههای تابستانه و زمستانه در مناطق ورامین و شهر ری. مجله دانش زراعت. جلد 5، شماره 6، صفحات 79 تا 91.
3
رجبی، غ.، a1372. علل بنیادی گسترش سن گندم در سالهای اخیر. مؤسسه تحقیقات آفات و بیماریهای گیاهی، وزارت جهاد کشاورزی.
4
رجبی، غ.، b1372. تجربیات بهدست آمده در نوسانات دورهای جمعیت سن گندم. نشریه آفات و بیماریهای گیاهی. جلد 61، شمارههای 1 و 2، صفحات 1 تا 12.
5
رجبی، غ.ر.، 1379. اکولوژی سنهای زیانآور گندم و جو در ایران. وزارت کشاورزی، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی. 343 صفحه.
6
رجبی،غ.ر. و ترمه، ف.، 1366. تغذیه و تولیدمثل دو گونه سن گندم . Eurygaster integriceps Putو Aelia furcula F. در اماکن زمستانگذرانی و رابطه این پدیده با گسترش آنها در سالهای اخیر. نشریه مؤسسه بررسی آفات و بیماریهای گیاهی. دوره 55، شمارههای 1 و 2، صفحات 131 تا 139.
7
رجبی، غ.ر. و ترمه، ف.، 1370. بررسی تکمیلی زندگی دو سن مهم گندم Eurygaster integriceps Put. و Aelia furcula F. در ارتفاعات ایران. نشریه مؤسسه بررسی آفات و بیماریهای گیاهی. دوره 59، شمارههای 1 و 2، صفحات 1 تا 9.
8
زمردی، ع.، 1371. سابقه سن گندم در ایران. گزارش کنفرانس سن گندم، دانشکده کشاورزی دانشگاه تهران. صفحات 31 تا 34.
9
کریمی، ه.، 1371. گندم. مرکز نشر دانشگاهی تهران. 599 صفحه.
10
صلواتیان، م.، 1370. لزوم شناسایی عوامل مؤثر محیط در مبارزه با آفات گیاهان زراعی. انتشارات سازمان ترویج کشاورزی، چاپ اول، تهران. 203 صفحه.
11
مدرس اول، م.، 1371. بیواکولوژی سن گندم و بررسی علل طغیان آن در منطقه تراکیا. گزارش کنفرانس سن گندم. دانشکده کشاورزی دانشگاه تهران. صفحات 51 تا 70.
12
مردوخی، و. و حیدری، م.، 1371. بررسی تغییرات جمعیت و خسارت سن معمولی در مزارع دیم استان کردستان. مجله آفات و بیماریهای گیاهی. جلد 60، شمارههای 1 و 2، صفحات 29 تا 41.
13
Coppel, H.C. and Mertins, J.W., 1977. Biological insect pest suppression. Springer Verlag. 316 p.
14
Critchley, B.R., 1998. Literature review of sunn pest Eurygaster integriceps Put. (Hemiptera, Scutelleridae). Crop Protection.Vol. 17, No. 4, pp: 271-278.
15
Farid, A., 1985. Preliminary investigations on sunn pests (Eurygaster intergriceps Put.) in Jiroft (Kerman). Bull. Plant Protection Organization Iran.Vol. 30: pp: 74-86.
16
Foerster, L.A. and De Queiroz, J.M., 1990. Natural incidence of parasitism of eggs of pentatomids on soyabeans in central south Parana. Anais da sociedade entomologica do Bradil. Vol. 19, No. 1, pp: 221-232.
17
Ghahari, H.; Buhl, P.N. and Kocak, E., 2011. Checklist of Iranian Trissolcus Ashmead (Hymenoptera: Platygastroidea: Scelionidae: Telenominae). International Journal of Environmental Studies. Vol. 68, pp: 593-601.
18
Ghahari, H.; Moulet, P. and Rider, D.A., 2014. An annotated catalog of the Iranian Pentatomoidea (Hemiptera: Heteroptera: Pentatomomorpha). Zootaxa. Vol. 3837, No. 1, pp: 1-95.
19
Ghahari, H.; Buhl, P.N.; Kocak E. and Iranipour, Sh., 2015. An annotated catalogue of the Iranian Scelionidae (Hymenoptera: Platygastroidea). Entomofauna. Vol. 36, pp: 349-376.
20
Gostov, V. and Kontev, Kh., 1983. The effect of damage caused by the sunn pest on the backing strength of flour from regioned varieties of wheat, Rasteniev deni Nauki. Vol. 18, No. 4, pp: 33-43.
21
Gul, A.; Akbay, C. and Direk, M., 2006. Sunn pest control policies and effect of sunn pest damage on wheat quality and price in Turkey. Quality & Quantity. Vol. 40, pp: 469-480.
22
Hassell, M.P. and Waag, J.K., 1984. Host parasitoid population interactions. Annual Review of Entomology. Vol. 29, pp: 89-114.
23
Kogan, M., 1998. Integrated pest management: Historical perspectives and contemporary developments. Annual Review of Entomology.Vol. 43: pp: 243-270.
24
Lodos, N., 1961. Investigations on Sunn Pest (Eurygaster integriceps Put.) in Turkey, Iran and Syria. (Distributions, Damges, Biology, Parasites and Control). Ege University, Ziraat Fakültesi Yayınları. No. 51, 115 p.
25
Lodos, N.; Onder, F. and Simsek, Z., 1984. Study of overwintering insect fauna and research on flight activity and migration behaviour of some other species at the spring emergence during the migration period of the sunn pest (Eurygaster integriceps Put. Heteroptera: Scutelleridae) to the plain of diarbakir (Karadage). Bitki koruma Bulteni. Vol. 24, No. 2, pp: 75-78.
26
Martin, H.; Javahery, M.; Maddah, M. and Radjabi, G., 1963. Parasites des punaises des cereales (Programme de Lutt contre les punaises des cereal en Iran). Rapport. No. 11, 12 p.
27
Popov, C., 1978. Investigations of the effect of the fat body on population changes in Eurygaster integriceps Put. after diapause. Archiv Dur phytopatho logie and Pflanzenschutz.Vol. 14, No. 6, pp: 373-382.
28
Popov, C., 1984. Influence of the accumulation of fat on the development of the adults of Eurygaster integriceps Put. after the termination of feeding. Probleme de Protectical Plantelor.Vol. 12, No. 2, pp: 157-167.
29
Safavi, M., 1974. Etude bio-ecologiue des hymenopteres parasites des oeufs des punaises des cereals en Iran. Plant Pests and Diseases Research Institute, Tehran. 159 p.
30
Samin, N.; Shojai, M.; Asgari, Sh.; Ghahari, H. and Kocak, E., 2010. Sunn pest (Eurygaster integriceps Puton, Hemiptera: Scutelleridae) and its scelionid (Hymenoptera: Scelionidae) and tachinid (Diptera: Tachinidae) parasitoids in Iran. Linzer biologische Beiträge. Vol. 42/2: pp: 1421-1435.
31
Schowalter, T.D., 2016. Insect ecology. An ecosystem approach (4th edition). Academic press, Elsevier. 774 p.
32
Shurovenkov, Y.B.; Frmakov, A.V.; Boiko, N.I.; Michailova, N.A. and Volodichev, M.A., 1984. Grain condition and the sunn pest. Zashchita Rastenii. Vol. 8, pp: 8-9.
33
Simsek, N. and Sezar, A.C., 1985. Preliminary studies on the egg and nymph populations of sunn pest (Eurygaster integriceps Put.) and the damage caused by it on wheat in Hatay. Bitki kruma.Vol.25, pp: 30-48.
34
Stavraki, H.G., 1982. Study on the biology and ecology of wheat pests of the family Pentatomidae in central Greece. Annales de I’ Institue phytopathologique Benaki. Vol. 13, No. 2, pp: 213-232.
35
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی روند رشد صدفچه مروارید ساز زنی (Pteria penguin) با ریزجلبک های ( Pavlova lutheri) و (Chaetoceros muelleri)
روند رشد صدفچه مروارید ساز زنی (Pteria penguin) در شرایط آزمایشگاه با استفاده از ریزجلبکهای (Pavlova lutheri) و (Chaetoceros muelleri) کشت داده شده با محیط کشت گیلارد f/2 بهمدت 30 روز مورد مطالعه قرار گرفت. در این مطالعه 4 تیمار آزمایشی و یک تیمار شاهد بهصورت مجزا و ترکیبی از ریز جلبکهای پاولوا و کتوسروس هرکدام با سه تکرار با تراکم 10 عدد صدفچه مورد بررسی قرار گرفتند. نتایج نشان داد بین طول پشتی شکمی صدفچهها در تیمارهای مختلف اختلاف معنیدار وجود ندارد (0/05<P)، امّا تیمار 5 تقریباً طول پشتی شکمی بیشتری را موجب شده است. از نظر طول پاشنه اختلاف معنیدار بین تیمارها مشاهده شده (0/05>P) و تیمار 1 بهترین وضعیت را نشان داد، هرچند این تیمار با تیمار 2 اختلاف معنیدار نداشتند. از دیدگاه ضخامت صدفچه ها اختلاف معنیداری بین تیمارها مشاهده نگردید (0/05<P). از نظر وزن بین تیمارها اختلاف معنیدار مشاهده شد (P<0/05) و تیمار 1 بیشترین وزن را تولید نمود. درصد بقاء نیز در تیمارهای مختلف اختلاف معنیداری را نشان داد (0/05>P) و تیمار شماره 1 بیشترین بقاء را بهخود اختصاص داده، هرچند بین این تیمار و تیمار شماره 2 اختلاف معنیداری مشاهده نگردید. در مجموع تیمار شماره 1 بهترین تیمار بوده ولی با توجه به نداشتن اختلاف معنیدار با تیمار شماره 2، میتوان تیمار مذکور را نیز مناسب رشد صدفچه مروارید ساز زنی دانست.
http://www.aejournal.ir/article_83092_3f34c5f392403c3d4ea198142cefe840.pdf
2018-09-23
445
450
رشد
ریزجلبک
Pteria penguin
Pavlova lutheri
Chaetoceros mulleri
پگاه
غلامی
mina93732@gmail.com
1
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران. صندوق پستی: 1311-79159
AUTHOR
علیرضا
سالارزاده
reza1375bandar@yahoo.com
2
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران. صندوق پستی: 1311-79159
LEAD_AUTHOR
احتشامی، ف.؛ ساوهدرودی، م. و بنایی، م.، 1373. تکثیر صدف لب سیاه و پرورش لارو حاصله تا مرحله آمبو. ایستگاه تحقیقات شیلاتی نرمتنان خلیج فارس. 35 صفحه.
1
جهانگرد، ع.ص.؛ اجلالی، ک. و قربانی، ص.، 1376. ارزیابی ذخایر صدفهای مرواریدساز لنگهای Pinctada radiataدر زیستگاههای لاوان و نخیلو. ایستگاه تحقیقات شیلاتی نرمتنان خلیج فارس.
2
حسینزادهصحافی، ه.؛ دقوقی، ب. و رامشی، ح.، 1379. اطلس نرمتنان خلیج فارس. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 208 صفحه.
3
عمرانی، س.ا ؛ نوری، ا. و رامشی، ح .، 1395 . بررسی اثر تراکم مختلف ریزجلبکهای Isochrysis aff. GalbanaوChaetoceros calcitrans بر برخی فاکتورهای رشد و بقای صدفچه مراوریدساز زنی Pteria penguin. مجله بومشناسی آبزیان. سال 6، شماره 2، صفحات 44 تا 50.
4
Aji, L.P.; 2011.The use of algae conecentrates, dried algae and algal substitutes to feed bivalves, Makara, Sains. Vol. 15, No. 1, pp: 1-9.
5
Benemann, J.R., 1992. Microalgae aquaculture feeds. J. Appl. Phycol. Vol. 4, No. 3, pp: 233-245.
6
Brown, M.R.; Jeffrey, S.W.; Volkman, J.K. and Dunstan, G.A., 1997. Nutritional properties of microalgae for mariculture. Aquaculture. Vol. 151, No. 1-4, pp: 315-331.
7
Caers, M.; Coutteau, P.; Lombeida, P. and Sorgeloos, P., 1998. The effect of lipid supplementation on the growth and fatty acid composition of Tapes philippinarum (L.) spat. Aquaculture, Amsterdam. Vol. 162, pp: 287299.
8
Delaunay, F.; Marty, Y.; Moal, J. and Samain, J.F., 1993. The effect of monospecific algal diets on growth and fatty acid composition of Pecten maximus (L.) larvae. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 173. No. 2, pp: 163-179.
9
Doroudi, M.S.; Southgate, P.C. and Mayer, R.J., 2003. Evaluation of partial substitution of live algae with dried Tetraselmis sp. for larval rearing of black-lip pearl oyster Pinctada margaritifera (L,) Aquaculture International.Vol. 10, pp:265-277.
10
Galley, T.H.; Batista, F.M.; Braithwaite, R.; King, j. and Beaumont, A.R., 2009. Optimisation of larval culture of the mussel Mytilus edulis (L.). Aquaculture International. Vol. 18, pp: 315-325.
11
Knauer, J. and Southgate, P.C., 1999. A review of the nutritional requirements of bivalves and the development of alternative and artificial diets for bivalve aquaculture. Rev. Fish. Sci. Vol. 7, pp: 241-280.
12
Martı´nez-Ferna´ndez, E.; Acosta-Salmo´n, H. and Rangel-Da´valos, C., 2004. Ingestion and digestion of 10 species of microalgae by winged pearl oyster (Pteria sterna) (Gould, 1851) larvae. Aquaculture. Vol. 230, pp: 417-423.
13
Martínez-Fernández, E.; Acosta-Salmón, H. and Southgate, P.C., 2006. The nutritional value of seven species of tropical microalgae for black-lip pearl oyster (Pinctada margaritifera, L.) larvae. Aquaculture. Vol. 257, No. 1-4, pp: 491-503.
14
Milke, L.M.; Bricelj, V.M. and Parrish, C.C., 2008. Biochemical characterization and nutritional value of three Pavlova spp. in unialgal and mixed diets with Chaetoceros muelleri for postlarval sea scallops, Placopecten magellanicus. Aquaculture. Vol. 276, No. 1-4, pp: 130-142.
15
Pettersen, A.K.; Turchini, G.M.; Jahangard, S.; Ingram, B.A. and Sherman, C.D.H., 2010. Effects of different dietary microalgae on survival, growth, settlement and fatty acid composition of blue mussel (Mytilus galloprovincialis) larvae. Aquaculture. Vol. 309, No. 1-4, pp: 115-124.
16
Ponis, E.; Parisi, G.; Chini Zittelli, G.; Lavista, F.; Robert, R. and Tredici, M.R., 2008. Pavlovalutheri: production, preservation and use as food for Crassostrea gigas larvae. Aquaculture. Vol. 282, pp: 97-103.
17
Richmond, A., 2008. Handbook of microalgal culture: biotechnology and applied phycology. John Wiley and Sons. 566 p.
18
Ronquillo, J.D.; Fraser, J. and McConkey, A.J., 2012. Effect of mixed microalgal diets on growth and polyunsaturated fatty acid profile of European oyster (Ostreaedulis) juveniles. Aquaculture. Vol. 360-361, pp: 64-68.
19
Taylor, J.J.; Southgate, P.C. and Rose, R.A., 2004. Effects of salinity on growth and survival silver-lip pearl oyster, Pinctada maxima, spat. Journal of Shellfish Research. Vol. 23, pp: 375-377.
20
Volkman, J.; Jeffrey, S.; Nichols, P.; Rogers, G. and Garland, C., 1989. Fatty acid and lipid composition of 10 species of microalgae used in mariculture. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. Vol. 128, No. 3, pp: 219-240.
21
Volkman, J.K.; Dunstan, G.A.; Jeffrey, S.W.; and Peter, S. and Kearney, P.S., 1991. fatty acids from microalgae of the genus pavlova fatty acids from microalgae of the genus pavlova. Phyrochemistry. Vol. 30. No. 6. pp. 1855-1859.
22
Yavari, V., 1994. Ttheinfluence of environmental parameters on the biology of culture oyster, crassostrea madrasensis. Ph.D. thesis, CMFRI, Co. Chin, India. 290 P.
23
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی پراکنش زمانی مکانی اویستر صخره ای Saccostrea cucullata در سواحل خلیج فارس
پژوهش حاضر با هدف دستیابی به پراکنش زمانی و مکانی اویستر صخرهای یا خوراکی، Saccostrea cucullataدر امتداد خط ساحلی خلیج فارس از استان هرمزگان تا استان خوزستان انجام شد. نمونه ها با استفاده از پرتاب تصادفی کودرات با اندازه 25/. مترمربع و در منطقه بین جزر و مدی از زمستان 1394 تا پاییز 1395 جمع آوری شدند. براساس نتایج، بیش ترین مقدار طول اویسترها در جزیره هرمز و 55/42 میلی متر به دست آمد. بدین صورت که در فصل بهار، تابستان و زمستان، کم ترین مقدار طول و عرض در بندر عامری و کم ترین مقدار وزن خشک و تر در بندرعباس ثبت شد. در فصل پاییز ایستگاه بندرعباس کم ترین مقادیر اندازهگیری شده برای وزن خشک پوسته، وزن تر کل، طول و عرض نمونههای مورد مطالعه را به خود اختصاص داد. نتایج بررسی رابطه بین شاخصهای محیطی اندازهگیری شده با وزن خشک پوسته، وزن تر کل، طول و عرض نمونهها نشان داد که تنها طول و وزن تر با شوری و دما رابطه معنیدار دارند. با این وجود در نگاه کلی رابطه عکس ولی قوی بین شوری با طول و عرض نمونهها براساس آنالیز CCA مشاهده شد. هم چنین دما نیز رابطه عکس قوی با طول و عرض و ضعیف تری با وزن خشک و وزن تر نشان داد. با توجه به فراوانی قابل توجه جمعیت های اویستر در برخی از مناطق خلیج فارس، اهمیت بیش تر این موجودات مشخص گردیده و لزوم مدیریت منابع آن ها و حتی امکان سنجی پرورش آن ها را آشکار می سازد.
http://www.aejournal.ir/article_83220_c4dada7514fe1c3bf32e3cc6892a1245.pdf
2018-09-23
451
456
اویستر صخره ای
پراکنش
خلیج فارس
CCA
روح الله
زارع
rzare59@gmail.com
1
گروه زیست شناسی دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی و جوی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران، صندوق پستی: 3995
AUTHOR
احسان
کامرانی
eza47@yahoo.com
2
گروه شیلات، دانشکده علوم و فنون دریایی و جوی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران، صندوق پستی: 3995
LEAD_AUTHOR
علی
نصرالهی
a_nasrolahi@sbu.ac.ir
3
گروه زیست شناسی و زیست فناوری دریا و آبزیان، دانشکده علوم و فناوری های زیستی، دانشگاه شهید بهشتی، تهران، ایران. صندوق پستی: 1983969411
AUTHOR
راجر
من
rmann@vims.edu
4
Department of Fisheries Science, Virginia Institute of Marine Science, College of William and Mary, Virginia, USA, 23062
AUTHOR
عبدالهی مامودان، س.، 1388. پایش زیستی فلزات جیوه، سرب، کادمیوم و آلومینیوم با استفاده از بارناکل در منطقه بندرامام خمینی (ره). پایان نامه کارشناسی ارشد. دانشگاه علوم و فنون دریایی خرمشهر. 110 صفحه.
1
نوان مقصودی، م.، 1376. بررسی مقادیر آلودگی ناشی از هفت عنصر سنگین (As, V, Cd, Cr, Hg, Pb, Ni) و هیدروکربن در بندرهای شهید رجایی و شهید باهنر، بندرعباس. رساله دکترای تخصصی. دانشگاه تربیت مدرس. 100 صفحه.
2
گرامی، م.ح.، 1395. تعیین اثرات صید میگو بر تنوع و تراکم زمانی- مکانی بزرگ بیمهرگان کفزی در صیدگاههای میگوی استان هرمزگان، خلیج فارس. رساله دکترای تخصصی. دانشگاه گنبد کاووس. 109 صفحه.
3
نیامیمندی، ن.، 1389. پراکنش گونه های مختلف صدف محار مرواریدساز (.Pinctada spp) و تخمین فراوانی صدف محار (Pinctada radiate (Learch, 1814 در سواحل استان بوشهر. پژوهش های علوم و فنون دریایی. دوره 5، شماره 1، صفحات 1 تا 11.
4
نیامیندی، ن.، 1390. ارزیابی ذخایر صدف ملالیس (Solen brevis Gray, 1832) در سواحل استان بوشهر، خلیج فارس. مجله علمی شیلات ایران. دوره 20، شماره 1، صفحات 123 تا 134.
5
نیامیمندی ن.؛ یاراحمدی ا. و تنگستانی ع.، 1392. شناسایی و پراکنش صدف های خوراکی و تزئینی در خط ساحلی استان بوشهر، خلیج فارس. دوره 4، شماره15، صفحات 55 تا 66.
6
Ashja Ardalan, A., 1999. Distribution and growth biology of rock oyster Saccostrea cucullata in the Oman Sea. PhD Thesis, Islamic Azad University, Science and Research Branch, Tehran. 175 p.
7
Baggett, L.P.; Powers, S.P.; Brumbaugh, R. and and Morlock, S., 2014. Oyster habitat restoration monitoring and assessment handbook. The Nature Conservancy, Arlington, VA, USA. 96 p.
8
Beisel, J.N.; Usseglio-Polatera, P.; Thomas, S. and Moreteau, J.C., 1998. Stream community structure in relation to spatial variation: the influence of mesohabitat characteristics. Hydrobiologia. Vol 389, No. 3, pp: 73-88.
9
Bunn, S.E. and Boon, P.I., 1993. What sources of organic carbon drive food webs in billabongs? A study based on stable isotope analysis. Oecologia. Vol. 96, No. 6, pp: 85-94.
10
Coen, L.D.; Bolton-Warberg, M. and Stephen, J.A., 2006. An Examination of Oyster Reefs as a Biologically-Critical Estuarine Ecosystems. Final Report, Grant R/ER-10, Submitted to the South Carolina Sea Grant Consortium. 214 p.
11
Culp, J.M.; Walde, S.J. and Davies, R.W., 1983. Relative importance of substrate particle size and detritus to stream benthic macroinvertebrate microdistribution. Can. J. Fish. Aqu. Sci. Vol. 40, No. 10, pp: 1568-1574.
12
Davenport, J. and Wong, T.M., 1992. Effects of temperature and aerial exposure on three tropical oyster species, Crassostrea belcheri, Crassostrea iradelei and Saccostrea cucullata. J. Therm. Boil. Vol. 17, No. 3, pp: 135-139.
13
Dunlop, J.E.; Horrigan, N.; McGregor, G.; Kefford, B.J.; Choy, S. and Prasad, R., 2008. Effect of spatial variation on salinity tolerance of macroinvertebrates in Eastern Australia and implications for ecosystem protection trigger values. Environmental Pollution. Vol. 151, No. 3, pp: 621-630.
14
Dye, A.H., 1989. Studies on the ecology of Saccostrea cucullata (Born, 1778) (Mollusca: Bivalvia) on the east coast of southern Africa. African Zoology. Vol. 24, No. 2, pp: 110-115.
15
Feely, R.A.; Sabine, C.L.; Lee, K.; Berelson, W.; Kleypas, J.; Fabry, V.J. and Millero, F.J., 2004. Impact of anthropogenic CO2 on the CaCO3 system in the oceans. Science. Vol. 305, pp: 362-366.
16
Foley, M.M.; Halpern, B.S.; Micheli, F.; Armsby, M.H.; Caldwell, M.R.; Crain, C.M.; Prahler, E.; Rohr, N.; Sivas, D. and Steneck, R.S., 2010. Guiding ecological principles for marine spatial planning. Marine Policy. Vol. 34, No. 5, pp: 955-966.
17
Gaspar, M.B.; Santos, M.N. and Vasconcelos, P., 2001. Weight–length relationships of 25 bivalve species (Mollusca: Bivalvia) from the Algarve coast (southern Portugal). J. Marine Biol. Association of the UK. Vol. 81, No. 5, pp: 805-807.
18
Grabowski, J.H. and Peterson, C.H., 2007. Restoring oyster reefs to recover ecosystem services. In: Cuddington, K., J. E. Byers, W.G. Wilson, and A. Hastings (eds). Ecosystem Engineers: concepts, theory and applications. Elsevier Academic Press, Amsterdam. pp: 281-298.
19
Hermosilla, C. and Valavanis, F.V., 2011. Assessing Octopus vulgaris distribution using presence-only model methods. Hydrobiologia. Vol. 670, No. 1, pp: 35-47.
20
Oksanen, J.; Blanchet, F.G.; Kindt, R. and Legendre, P., 2015. Vegan: Community Ecology Package. R package version 2.3-0. http://CRAN.R-project.org/package = vegan.
21
Pauly, D., 1984. Fish population dynamics in tropical waters: a manual for use with programmable calculators. Vol. 8, 325 p.
22
Petroody, A.; Ashrafi, S.; Eagderi, S. and Khazaee, M., 2013. Investigation of body size effect on bioaccumulation pattern of Cd, Pb and Ni in the soft tissue of rock oyster Saccostrea cucullata from Laft Port. J. Persian Gulf. Vol. 4, No. 14, pp: 39-45.
23
Potter, M.A. and Hill, B.J., 1982. Heat mortality in the Sydney rock oyster, Saccostrea (Crassostrea) commercialis and the effectiveness of some control measures. Aquaculture. Vol. 29, pp: 101-108.
24
Rost, B. and Riebesell, U., 2004. Coccolithophores and the biological pump: responses to environmental changes, Springer, Berlin, Germany. 125 p.
25
Shirneshan, G.; Bakhtiari, A.R.; Kazemi, A.; Mohamadi, M. and Kheirabadi, N., 2012. Oyster Saccostrea cucullata as a biomonitor for Hg contamination and the risk to humans on the coast of Qeshm Island, Persian Gulf, Iran. Bull. Envir. Contam. Toxicol. Vol. 86, No. 6, pp: 962-966.
26
Suresh, K. and Shafiq, A.M., 1992. Durairaj G. Ecology of interstitial meiofauna at Kalpakkam coast, east coast of India, Indian. J. Marine Sci. Vol. 21, pp: 217-219.
27
Thorne, R. and Williams, P., 1997. The response of benthic macroinvertebrates to pollution in developing countries: a multimetric system of bioassessment. Freshwater Biology. Vol. 37, No. 3, pp: 671-686.
28
Thrush, S.F. and Dayton, P.K., 2010. What Can Ecology Contribute to Ecosystem-Based Management? Annual Review of Marine Science. Vol. 2, No. 1, pp: 419-441.
29
ORIGINAL_ARTICLE
بررسی نقش عوامل محیطی بر اجتماعات شکم پایان خلیج گواتر- استان سیستان و بلوچستان
شکمپایان نقش بومشناختی مهمی در شبکه غذایی جنگلهای مانگرو ایفا میکنند. این مطالعه با هدف بررسی اجتماعات شکمپایان در فصول، مناطق مختلف جزر و مدی و فواصل مختلف از اسکله ماهیگیری در خلیج گواتر- استان سیستان و بلوچستان انجام شد. نمونهبرداری از شکمپایان در قالب سه ترانسکت که عمود بر خط ساحلی بهداخل جنگلهای مانگرو کشیده شده با سه تکرار در منطقه مجاور آب، بینابینی و مجاورخشکی انجام شد. از آزمون آماری ANOSIM یکطرفه جهت تفکیک مناطق مختلف جزر و مدی، فصول و فاصله از اسکله صیادی استفاده شد. آزمون SIMPER نیز جهت تشخیص اینکه کدام گونهها بیشتر در شباهت و یا عدم شباهت اجتماعات شکمپایان در مناطق و یا فصول مختلف مشارکت داشتهاند، مورد استفاده قرار گرفت. نتایج آزمون ANOSIM نشان داد که اجتماعات شکمپایان بین مناطق مختلف جزر و مدی اختلاف معنیداری (0/01>p) دارند و اجتماعات شکمپایان در منطقه مجاور آب متفاوت از منطقه بینابینی و مجاور خشکی است. این آزمون هیچ اختلاف معنیداری را بین چهار فصل و در فواصل متفاوت از اسکله صیادی نشان نداد، بنابراین میتوان گفت در این منطقه فصل تاثیری در اجتماعات شکمپایان ندارد و دخالت کم در اسکله صیادی موجب تغییری جوامع شکمپایان نشده است. نتایج آزمون SIMPER نشان داد که گونههای Asseminea sp1 وAsseminea sp2 بهترتیب با متوسط عدم تشابه 19/13 و 09/13 درصد از 53/62 متوسط عدم تشابه کل، بیشترین نقش را در تفکیک دو منطقه جزر و مدی از نظر اجتماعات شکمپایان داشتهاند.
http://www.aejournal.ir/article_83233_26fdcde0152a9253568088d7a9c1423b.pdf
2018-09-23
457
462
اجتماعات زیستی
شکمپایان
جنگلهای مانگرو
خلیج گواتر
استان سیستان و بلوچستان
سعیده
مرادی شهربابک
saeideh.moradi@yahoo.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
ملیحه
عرفانی
maliheerfani@uoz.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه زابل، زابل، ایران
LEAD_AUTHOR
افشین
دانه کار
afdanehkar@gmail.com
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه تهران، کرج، ایران
AUTHOR
اصغری، ث.؛ احمدی، م.ر.؛ محمدیزاده، ف. و اجلالی، ک.، 1392. بررسی اثرات مانسون تابستانه بر فراوانی دوکفهایها و شکمپایان در سواحل ایرانی دریای عمان. مجله علمی شیلات ایران. سال 22، شماره 2، صفحات 15 تا 23.
1
بلوچ، م. و سماعی، ع.، 1377. معرفی 16 گونه از شکمپایان سواحل جزر و مدی دریای عمان. خلاصه مقالات دومین کنگره علوم و فنون دریایی و جوی ایران. صفحه 14.
2
دانهکار، ا.؛ عرفانی، م.؛ نوری، غ.؛ عقیقی، ح.؛ مرویمهاجر، م.ر. و اردکانی، طاهره.، 1391. بررسی تغییرات وسعت رویشگاه مانگرو (مطالعه موردی: خور گواتردر استان سیتان و بلوچستان). مجله جنگل ایران. سال 4، شماره 3، صفحات 197تا 207.
3
عرفانی، م.؛ دانهکار، ا.؛ اردکانی، ط. و مرادیشهربابک، س.، 1392. مطالعه عناصر غذایی درختان حرا در خلیج گواتر- استان سیستان و بلوچستان. مجله پژوهشهای گیاهی. جلد 26، شماره 3، صفحات 320 تا 329.
4
کاظمیان، م.؛ دلفیه، پ. و خدادادی، م.، 1388. بررسی فراوانی دوکفهایها و شکمپایان در سواحل صخرهای طیس، واقع در خلیج چابهار. مجله بیولوژی دریا. سال 1، شماره 3، صفحات 63 تا 77.
5
کامرانی، ا.؛ بهزادی، س. و هاشمیپور، ف.، 1392. بررسی تنوع و شناسایی دوکفهایها و شکمپایان سواحل شهر بندرعباس (خلیج فارس). اقیانوسشناسی. سال 4، شماره 13، صفحات 53 تا 60.
6
کهن، ا.ر. و بادبردست،ز.، 1391. بررسی شاخصهای تنوع زیستی شکمپایان مناطق بین جزر و مدی بندرهای عسلویه و بوشهر. فصلنامه علمی محیط زیست. شماره 52، صفحات 3 تا 11.
7
ولایتزاده، م.؛ محاب، ه. و حسینی، م.، 1391. بررسی تنوع گونهای شکمپایان شمال خلیج فارس (استان بوشهر). فصلنامه علمی پژوهشی محیط زیست جانوری. سال 4، شماره 2، صفحه 15.
8
Abbott, R.T. and Dance, S.P., 1998. Compendium of seashells: a color guide to more than 4,200 of the world's marine shells. Amer Malacologists. Inc. 424 p.
9
Bosch, D. and Bosch, E., 1989. Sea shels of southrn Arabia. Motivate publishing.
10
Clarke, K.R., 1993. Non-parametric multivariate analyses of changes in community structure. Austral Ecol. Vol.18, pp:117–143.
11
Demopoulos, A.W.J. and Smith, C.R., 2010. Invasive mangroves alter macrofaunal community structure and facilitate opportunistic exotics. Marine Ecology Progress Series. Vol. 404, pp: 51-67.
12
Dittmann, S., 2001. Abondance and distribution of small infauna in mangroves of Missionary Bay, North Queensland. Australia. Rev. Biol. Trop. Vol. 49, No. 2, pp: 535-544.
13
Ghasemi, S.; Zakaria, M. and Mola Hoveizeh, N., 2011. Abundance of molluscs (Gastropods) at mangrove forests of Iran. Journal of American Science. Vol. 7, No. 1, pp: 660- 669.
14
Jaiswar, A.K. and Kulkarni, B.G., 2001. Vertical distribution of molluscs in the intertidal area in and around Mumbal, India. Journal of the Indian Fisheries Association. Vol. 28, pp: 93-100.
15
Khade, S.N. and Mane, U.H., 2012. Diversity of bivalve and gastropod molluscs in mangrove ecosystem from selected sites of Raigad district, Maharashtra, West coast of India. Recent Research in Science and Technology. Vol. 4, No. 10, pp: 16-20.
16
Macintosh, D.J. and Ashton, E.C., 2002. A Review of Mangrove Biodiversity Conservation and Management. Final Report 10/06/2002. Centre for Tropical Ecosystems Research. University of Aarhus, Denmark. 86 p.
17
Pawar, P.R., 2012. Molluscan Diversity in Mangrove Ecosystem of Uran (Raigad), Navi Mumbai, Maharashtra, West coast of India. Bull. Environ. Pharmacol. Life Sci. Vol. 1, No. 6, pp: 55-59.
18
Shanmugam, A. and Vairamani, S., 2008. Molluscs in Mangroves: A case study. Center of Advanced Study in Marine Biology. Annamalai University. India.
19
Subba. R.; Dey, A. and Barua, S., 1992. Fauna of west Bengal. Part 9. mollusca. Government of India. 268 p.
20
ORIGINAL_ARTICLE
تاثیر استفاده از ماکرو جلبک قرمز (.Gracillaria sp) بر رشد و بازماندگی کرم پرتار (Perinereis nuntia) به عنوان غذای زنده مولدین میگوی سفید غربی (Penaeus vannamei)
با توجه به ارزش غذایی مناسب و برابری نسبی ارزش غذایی کرم های پر تار (Perinereis nuntia) با نیازهای اولیه انواع آبزیان از جمله مولدین میگو، دستیابی به تکنیک زیستی تکثیر و پرورش اقتصادی این گونه از اهداف مهم محسوب می گردد. به این منظور، استفاده از جیرههای غذایی که بیش ترین رشد و کم ترین تلفات را در فرآیند پرورش داشته باشند حائز اهمیت میباشد. در مطالعه حاضر به منظور بررسی اثر ایتمهای مختلف غذایی بر روی میزان رشد و بازماندگی کرم پر تار(Perinereis nuntia)، سه تیمار تغذیه ای شامل غذای کنسانتره تجارتی، جلبک ماکروسکوپی سبز (.Entermorpha sp) و قرمز (.Gracillaria sp) به مدت دو ماه جهت تغذیه کرم ها استفاده گردید. پس از پایان دوره آزمایش، کرم ها برای بررسی میزان رشد و بازماندگی، مورد آزمایش قرار گرفتند. نتایج نشان داد که میانگین وزن نهایی، نرخ ویژه رشد و بازماندگی کرم ها در بین تیمارهای غذایی مختلف دارای اختلاف معنی داری بوده است (0/05 >p). بیشینه میزان موارد مذکور به ترتیب با مقدار (0/005±1/980 گرم)، (0/02 ± 1/44) و (2/3 ± 84 %) در میان تیمارهای مختلف مرتبط با تیمار جلبک قرمز بوده است. با توجه به نتایج مربوط به میزان رشد و بازماندگی P. nuntia در تغذیه با جلبک های قرمز (.Gracillaria sp)، لذا پیشنهاد می گردد کشت توام جلبک ها با کرم های پرتار به عنوان یک روش پرورش کرم های مزبور انجام گردد.
http://www.aejournal.ir/article_84167_8c389559fd75b4c811a0650c0180d2e7.pdf
2018-09-23
463
470
Perinereis nuntia
بازماندگی
ماکرو جلبک قرمز (.Gracillaria sp)
کرم های پرتار
ثمانه
اصغری
samaneh1355@yahoo.com
1
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران، صندوق پستی: 1311-79159
AUTHOR
علیرضا
سالارزاده
reza1375bandar@yahoo.com
2
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران، صندوق پستی: 1311-79159
LEAD_AUTHOR
کیومرث
روحانی
roohani2001@yahoo.com
3
سازمان تحقیقات آموزش و ترویج کشاورزی، مؤسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، پژوهشکده اکولوژی خلیج فارس و دریای عمان، بندرعباس، ایران، صندوق پستی: 1597- 79145
AUTHOR
مازیار
یحیوی
maziaryahyavi@yahoo.com
4
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران، صندوق پستی: 1311-79159
AUTHOR
فلورا
محمدی زاده
fmohammadi@gmail.com
5
گروه شیلات، واحد بندرعباس، دانشگاه آزاد اسلامی، بندرعباس، ایران، صندوق پستی: 1311-79159
AUTHOR
آزور، ا.، 1389. بررسی تیمارهای غذایی مختلف بر روی ترکیبات شیمیایی کرم پرتار پرنرئیس نانتیا (Perinereis nuntia). مجله آبزیان و شیلات. شماره 4، صفحات 13 تا 19.
1
دریا، م.؛ سجادی، م.م.؛ سوری نژاد، ا.؛ مسندانی، س.؛ قدرتی شجاعی، م. و مرحمتی زاده، ل.، 1393. تاثیر جیره های مختلف غذایی بر رشد و بازماندگی کرم پرتارPerinereis nuntia در شرایط پرورش آزمایشگاهی. مجله بوم شناسی آبزیان. شماره 4، صفحات 12 تا 19.
2
دریا، م.؛ سجادی، م.م.؛ سوری نژاد، ا. و مرحمتی زاده، ل.، 1395. تاثیر سطوح مختلف شوری بر میزان رشد و بازماندگی کرم پرتار Perinereis nuntia. مجله محیط زیست جانوری. سال 8، شماره 1، صفحات 152 تا 145.
3
دریا، م.؛ سجادی، م.م. و سوری نژاد، ا.، 1395. تعیین میزان هم آوری، رابطه هم آوری- وزن، قطر تخمک و نسبت جنسی کرم پرتار در آب های ساحلی خلیج فارس محدوده بندرعباسPerinereis nuntia. مجله توسعه آبزی پروری. سال 10، شماره 3، صفحات 93 تا 104.
4
سالارزاده، ع.، 1387. بررسی پراکنش، رشد و تولیدمثل کرم های پرتار خانواده نرئیده در منطقه کشندی بندرعباس و تاثیر گونه غالب بر رسیدگی جنسی مولدین میگوی سفید هندی (Fenneropenaeus indicus). پایان نامه دکتری تخصصی. 110 صفحه.
5
سیف آبادی، ج.؛ طاهری، م. و یزدانی، م.، 1386. تغییرات فصلی جمعیت کرم پرتار Nereis diversicolor (Nereidae) در اعماق مختلف ساحل بندر گز (خلیج گرگان). مجله پژوهش و سازندگی در امور دام و آبزیان. شماره 75، صفحات 125 تا 131.
6
طاهری، م.؛ سیف آبادی، ج. و یزدانی، م.، 1386. بررسی اکولوژیکی و تغییرات سالانه جمعیت پرتاران خلیج گرگان- ساحل بندرگز. مجله زیست شناسی ایران. جلد 20، شماره 2، صفحات 16 تا 20.
7
مرحمتی زاده، ل.؛ سجادی، م.م.؛ سوری نژاد، ا. و دریا، م.، 1394. تاثیر مقادیر مختلف کرم پرتار (Perinereis nuntia) در جیره غذایی مولدین میگوی سفید غربی (Penaeus vannamei) بر رشد، بازماندگی ومقاومت لاروهای حاصل در برابر استرس های محیطی. مجله پاتوبیولوژی مقایسه ای. سال 12، شماره 3، صفحات 1707 تا 1714.
8
Abbott, I. and Hollenberg, G.J., 1976. Marine Algae of California. Stanford. University Press. Stanford, CA. pp: 494-503.
9
AOAC. 1994. Official methods and recommended practices of the American Oil Chemists Society. Champaign, IL: The American Oil Chemists Society. Vol. 26, pp: 152-180.
10
Bakken, T. and Wilson, R.S., 2005. Phylogeny of nereidids (Polychaeta, Nereididae) with paragnaths. Zool. Scr. Vol. 34, pp: 507-547.
11
Bartels, H.D. and Zeeck, E., 1990. Reproductive behaviour of Nereis diversicolor (Annelida: Polychaeta). Marine Biology. Vol. 106, pp: 409-412.
12
Bartholomev, A., 2001. Polychaete key for Chesapeake Bay and coastal Virginia. 83 p.
13
Bertout, M., 1976.Spermatogenèse de Nereis diversicolor O.F. Müller (Annélide Polychète) I. Evolution du cytoplasme et elaboration de l’acrosome. J. Microsc. Biol. Cell. Vol. 25, pp: 87-94.
14
Bligh, E.G. and Dyer, W.J., 1959. A rapid method of total lipid extraction and purification. Canadian Journal of Biochemistry and Physiology. Vol. 37, pp: 911-917.
15
Durchon, M., 1971. La périodicité de la reproduction chez les néréidiens et ses problèmes. Bulletin de la Société Zoologique de France. Vol. 96, No. 3, pp: 283-300.
16
Elayaraja, S.; Murugesan, P.; Vijayalakshmi, S. and Balasubramanian, T., 2010. Antibacterial and antifungal activities of Perinereis cultrifera Indian Journal ofMarine Sciences. Vol. 39, pp: 257-261.
17
Fauchald, K., 1977. The polychaete worms, Definitions and keys to the orders, families and genera. Natural History Mueseum of Los Angeles county. 198 p.
18
Fauchald, K. and Jumars, P.A., 1979. The diet of worms: a study of polychaete feeding guilds. Oceanogr. Mar. Biol. Ann. Rev. Vol. 17, pp: 193-284.
19
Fidalgo, E. and Costa, P., 1999. Reproduction and growth in captivity of the polychaete Nereis diversicolor using to different kinds of sediment: preliminary assays. Biology Oceanography. Vol. 15, pp: 351-355.
20
Fidalgo, E.; Costa, P.; Narciso, L. and Cancela da Fonseca, L., 2000. Growth, survival and fatty acid profile of Nereis diversicolor(O. F. Müller, 1776) fed on six different diets. Bulletin ofMarine Science. Vol. 67, No. 1, pp: 337-343.
21
Goerke, H., 1971. Nereis fucata (Polychaeta, Nereidae) als Kommensale von Eupagurus berhardus (Crustacea, Paguridae). Entwicklung einer Population und Verhalten der Art. Veröff Inst Meeresforsch Bremerh. Vol. 13, pp: 79-118.
22
Goerke, H., 1966. Some methods for study of the biochemical constitution of marine invertebrates. Oceanogr. Marine Biology journal. Vol. 5, pp: 159-186.
23
Goff, L.J. and Zuccarello, G., 1994. the evolution of parasitism in red algae: cellular interactions of adelphoparasites and their hosts. J. Phycology. Vol. 30, pp: 695-720.
24
Gopalakrishnan, S.; Thilagam, H. and Vivek Raja, P., 2008. Comparision of heavy metal toxicity in life stages (spermiotoxicity, egg toxicity. embryotoxicity and larval toxicity) of Hydroides elegans. Chemosphere. Vol. 71, pp: 515-528.
25
Gregory, A., 2007. Response of macrobenthic communities to oil spills along Goa Coast. Environmental Science Department Institute of Science, Mumbia University. pp: 7-21.
26
Gremare, A.; Amouroux, J.M.; Charles, F.; Dinet, A.; Riaux Gobin, C.; Baudart, J.; Medernach, L.; Bodiou, J.Y.; Vetion,G.; Colomines, J.C. and Albert, P., 1997. Temporal change in the biochemical composition and nutritional value of the particulate organic matter available to surface depositfeeders: a two-year study. Marine Ecology Progress Series. Vol. 150, pp: 195-206.
27
Izuka, A., 2006. Replacing natural sand with vermiculite for culture substrate of sand worm Perinereis nuntia, Savigny. Annot Zool Jap. Vol. 6, pp: 295-305.
28
Lowry, O.H.; Rosebrough, N.J.; Farr, A.L. and Randall, R.J., 1951. Protein measurement with the Folin phenol reagent. J of Biological Chemistry. Vol. 193, pp: 265-275.
29
Manivannan, K.; Thirumaran, G.; Karthikai Devi, G.; Anantharaman, P. and Balasubramanian, T., 2009. Proximate Composition of Different Group of Seaweeds from Vedalai Coastal Waters (Gulf of Mannar): Southeast Coast of India. Middle-East Journal of Scientific Research. Vol. 4, No. 2, pp: 72-77.
30
Marsh, A.G. and Tenore, K.R., 1990. The role of nutrition in regulating the population dynamics of opportunistic, surface deposit feeders in a mesohaline community. Limnology and Oceanography. Vol. 35, pp: 710-724.
31
Mathew, R.P. and Holt, G.J., 2007. Experimental Studies to Evaluate Larval Survival of the Fire Shrimp, Lysmata debelius, to the Juvenile Stage. World Aquaculture Society. Vol. 38, pp: 102-113.
32
Meunpol, O.; Meejing, P. and Piyatiratitivorakul, S., 2005. Maturation diet based on fatty acid content for male Penaeus monodon broodstock. Aquac. Res. Vol. 36, pp: 1216-1225.
33
Nielsen, A.M.; Eriksen, N.T.; Iversen, J.J.L. and Riisgard, H.U., 1995. Feeding, growth and respiration in the polychaetes Nereis diversicolor (facultative filter-feeder) and N. virens (omniverous) a comparative study. Marine Ecology. Progress Series. Vol.125, pp: 149-158.
34
Norziah, M.H. and Ching, Y.Ch., 2000. Composition of edible seaweeds Gracilaria changgi. Food Chemistry. Vol. 68, pp: 69-76.
35
Nybakken, J.W., 1993. Marine Biology and ecological approach. Harper Collins College. 445 p.
36
Olive, P.; Rees, S. and Djunaedi, A., 1998. Influence of photoperiod and temperature on oocyte growth in the semelparous polychaete Nereis (Nean thes) virens. Marine ecology. Vol. 172, pp: 169-183.
37
Olive, P.J.W. and Garwood, P.R., 1981. Gametogenic cycle and population structure of Nereis (Hediste) diversicolor and Nereis (Nereis) pelagica from northeast England J Mar Biol Assoc UK. Vol. 61, pp: 193-213.
38
Petrusewicz, K. and Macfadyen, A., 1970. Productivity of Terrestrial Animals: Principles and Methods. IBP Handbook, vol. 13. Blackwell, Oxford. 190 p.
39
Prevedelli, D., 1991. Influence of temperature and diet on survival of Perinereis rullieri pilato (Polychaeta, Nereididae). Bolletino di zoologia. Vol. 58, pp: 225-228.
40
Prevedelli, D. and Vandini, R.Z., 1997. Survival and growth rate of Perinereis rullieri (Polychaeta, Nereididae) under different salinities and diets. Italian Journal of Zoology. Vol. 64, pp: 135-139.
41
Reeta, J., 2006. Fatty acid profiles of marine red alga Gracilaria spp (Rhodophyta, Gigartinales). Arch Latinoam Nutr. Vol. 52, No. 4, pp: 400-405.
42
Riisgard, H.U. and Nielsen, C., 2006. Feeding mechanism of the polychaete Sabellaria alveolata revisited: comment on Dubois et al. Mar. Ecol. Prog. Ser. Vol. 328, pp: 295-305.
43
Rohani, K.; Abdulalian, E. and Wing-Keong, N.g., 2012. Evaluation of the proximate, fatty acid and mineral composition of representative green, brown and red seaweeds from the Persian Gulf of Iran as potential food and feed resource. Food Science Technology journal. Vol. 49, No. 6, pp: 774-780.
44
Rouse, G.W. and Fauchald, K., 1995. Cladistics and polychaetes. Zoologica Scripta. Vol. 26, pp: 139-204.
45
Safavik, P.P., 2006. Allozyme electrophoretic analysis of the Upatva asicolata. diversicolor–H. japonica species complex (Polychaeta: Nereididae). Marine Biology (Berlin). Vol. 118, No. 3, pp: 463-470.
46
Sasidharan, S.; Darah, I.; Mohd, J. and Noordin, M., 2007. Free radical Scavenging Activity and Total Phenolic Compounds of Gracilaria changii. International Journal of Natural and Engineering Sciences. Vol. 1, No. 3, pp: 115-117.
47
Techaprempreecha S.; Khongchareonporn N.; Chaicharoenpong, C.; Aranyakananda, P.; Chunhabundit, S. and Petsom, A., 2011. Nutritional composition of farmed and wild sandworms, Perinereis Nuntia. Animal Feed Science and Technology. Vol. 169, pp: 265-269.
48
Trono, G.C., 2003. Field Guide and Atlas of the Seaweed Resources of the Philippines. Bookmark, Inc. Makati City, Philippines. 306 p.
49
Turan, F.; Ozgun, S.; Sayın, S. and Ozyılmaz, G., 2015. Biochemical composition of some red and green seaweeds from Iskenderun Bay, the northeastern Mediterranean coast of Turkey. Black Sea/Mediterranean Environment journal. Vol. 21, No. 3, pp: 239-249.
50
Wilson, R.S. and Glasby, C.J., 1993. A revision of the Perinereis nuntia species group (Polychaeta: Nereididae). Rec. Aust. Mus. Vol. 45, pp: 253-277.
51
ORIGINAL_ARTICLE
مقایسه ویژگی ضداکسیدانی بافت تر و خشک خیار دریایی Holothuria leucospilota
ویژگی های ضداکسیدانی و آنالیز تقریبی ارزش غذایی خیار دریایی Holothuria leucospilota مورد ارزیابی قرار گرفت. بافت دیواره بدن و اندام های احشایی به صورت جداگانه، و به دو شکل تازه و خشک شده (آبدهی شده) بررسی شدند. سنجش پروتئین، چربی، رطوبت، خاکستر و کربوهیدرات از دیواره بدن به تنهایی و کل بدن انجام شد. عصارههای آبی، اتانولی و متانولی نمونه های دیواره بدن و اندام های داخلی از بافت های تازه و خشک شده (آبدهی شده) توسط آزمون پراکسیداسیون لیپیدی مالون دی آلدهید و فنول کل مقایسه شدند. نتایج نشان داد پس از خشک کردن و آبدهی دوباره، رطوبت نمونه ها کاهش معنی داری یافت (0/05>p) و نسبت پروتئین و چربی در نمونه ها افزایش داشت. نتایج ارزیابی به روش مالون دی آلدئید (MDA) نشان داد اندام های داخلی دارای ویژگی ضداکسیدانی بیش تری نسبت به دیواره بدن خیارهای دریایی هستند. بیش ترین میزان مالون دی آلدهید (کم ترین خاصیت ضداکسیدانی) در عصاره اتانولی بافت دیواره تازه با مقدار 0/2±1/01 میکرومول در میلی گرم وزن خشک و کم ترین میزان آن (بیش ترین خاصیت ضداکسیدانی) در عصاره آبی اندام های داخلی خشک با مقدار 0/03±0/43 میکرومول در میلی گرم وزن خشک مشاهده شد. هم چنین بیش ترین میزان محتوای فنلی در عصاره متانولی بافت دیواره تازه (0/01±1/17 معادل میلی گرم گالیک اسید درگرم وزن خشک) و کم ترین مقدار فنول کل در عصاره اتانولی اندام های داخلی تازه اندازه گیری شد (0/02±0/26 معادل میلی گرم گالیک اسید در گرم وزن خشک). تفاوت نتایج ضداکسیدانی مالون دی آلدئید و فنول کل نشان دهنده این است که منشا ویژگی ضداکسیدانی خیار دریایی بررسی شده به اجزای دیگری به جز ترکیبات فنولی بستگی دارد. ترکیبات زیست فعال ضداکسیدانی خیار دریایی H. leucospilota، می تواند به عنوان پیش ماده داروهای جدید مورد کاوش قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_84222_60bae67612a9c88ce6b9efc4116d28c1.pdf
2018-09-23
471
476
فراورده های طبیعی دریا
خارپوستان
داروخوراک
خلیج فارس
احمد
شادی
shadi@pgu.ac.ir
1
گروه زیست فناوری دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ایران
LEAD_AUTHOR
خانمناز
عبادی
khanomnaz.ebadi@gmail.com
2
گروه زیست فناوری دریا، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه خلیج فارس، بوشهر، ایران
AUTHOR
پیشهورزاد، ف.؛ یوسف زادی، م.؛ کامرانی، ا.؛ معینی زنجانی، ت.؛ علی احمدی، آ. و کشاورز ، م.، 2014 . خواص آنتی اکسیدانی عصاره های دو گونه خیار دریایی خلیج فارس Holothuria parva و Holothuria leucospilota. نشریه علمی بوم شناسی آبزیان. دوره 4، شماره1 ، صفحات 29 تا 34.
1
Afanas’ ev, I.B., 1991. Superoxide ion: chemistry and biological implications. Vol. 2, CRC press. 296 p.
2
Althunibat, O.; Ridzwan, B.; Taher, M.; Daud, J.; Jauhari Arief Ichwan, S. and Qaralleh, H., 2013. Antioxidant and cytotoxic properties of two sea cucumbers, Holothuria edulis lesson and Stichopus horrens Selenka. Acta Biologica Hungarica. Vol. 64, No. 1, pp: 10-20.
3
Aydın, M.; Sevgili, H.; Tufan, B.; Emre, Y. and Köse, S., 2011. Proximate composition and fatty acid profile of three different fresh and dried commercial sea cucumbers from Turkey. International Journal of Food Science & Technology. Vol. 46, No. 3, pp: 500-508.
4
Beutler, J.A.; McKee, T.C.; Fuller, R.W.; Tischler, M.; Cardellina, J.H.; Snader, K.M. and Boyd, M.R., 1993. Frequent occurrence of HIV-inhibitory sulphated polysaccharides in marine invertebrates. Antiviral Chemistry and Chemotherapy. Vol. 4, No. 3, pp:167-172.
5
Çakli, Ş.; Cadun, A.; Kişla, D. and Dincer, T., 2004. Determination of quality characteristics of Holothuria tubulosa,(Gmelin, 1788) in Turkish sea (Aegean Region) depending on sun drying process step used in Turkey. Journal of Aquatic Food Product Technology. Vol. 13, No. 3, pp: 69-78.
6
changlee, M.V.; Price, R.J. and lampila, L.E., 1989. Effect of processing on proximate composition and mineral content of sea cucumbers (Parastichopus spp.). Journal of Food Science. Vol. 54, No. 3, pp: 567-568.
7
de Quiros, A.R.B.; Lopez-Hernandez, J. and Simal Lozano, J., 2001. Determination of vitamin C in sea urchin: Comparison of two HPLC methods. Chromatographia. Vol. 53, pp: 246-249.
8
Ehsanpour, Z.; Archangi, B.; Salimi, M.; Salari, M.A. and Zolgharnein, H., 2015. Cytotoxic Assessment of Extracted Fractions of Sea Cucumber Holothuria parva on Cancer Cell Line (MCF7) and Normal Cells. Journal of Oceanography. Vol. 6, No. 21, pp: 89-96.
9
Golriz, D.; Jamili, Sh. and Ramezani Fard, E., 2017. Evaluation of the antioxidant activity of dried (rehydrate) and fresh sea cucumber, Holothuria parava. ISFJ. Retrieved from http://isfj.ir/article-1-1649-en.html.
10
Grigor’eva, M.P. and Stepanova, E.N., 1979. Determination of the vitamin E in fish and fish products. Voprosy Pitaniia. Vol. 1, pp: 59-63.
11
Janakiram, N.B.; Mohammed, A.; Zhang, Y.; Choi, C.I.; Woodward, C.; Collin, P. and Rao, C.V., 2010. Chemopreventive effects of Frondanol A5, a Cucumaria frondosa extract, against rat colon carcinogenesis and inhibition of human colon cancer cell growth. Cancer Prevention Research. Vol. 3, No. 1, pp: 82-91.
12
Kariya, Y.; Mulloy, B.; Imai, K.; Tominaga, A.; Kaneko, T.; Asari, A. and Ishii, T., 2004. Isolation and partial characterization of fucan sulfates from the body wall of sea cucumber Stichopus japonicus and their ability to inhibit osteoclastogenesis. Carbohydrate Research. Vol. 339, No. 7, pp: 1339-1346.
13
Kei, S., 1978. Serum lipid peroxide in cerebrovascular disorders determined by a new colorimetric method. Clinica Chimica Acta. Vol. 90, No. 1, pp: 37-43.
14
Kwon, T. and Watts, B.M., 1964. Malonaldehyde in Aqueous Solution and Its, Role as a Measure of Lipid Oxidation in Foods. Journal of Food Science. Vol. 29, No. 3, pp: 294-302.
15
Liu, C., 1995. Chinese dietary therapy. Churchill Livingstone.
16
Ohkawa, H.; Ohishi, N. and Yagi, K., 1979. Assay for lipid peroxides in animal tissues by thiobarbituric acid reaction. Analytical Biochemistry. Vol. 95, No. 2, pp: 351-358.
17
Purcell, S.W.; Samyn, Y. and Conand, C., 2012. Commercially important sea cucumbers of the world.
18
Qi, H.; Zhang, Q.; Zhao, T.; Chen, R.; Zhang, H.; Niu, X. and Li, Z., 2005. Antioxidant activity of different sulfate content derivatives of polysaccharide extracted from Ulva pertusa (Chlorophyta) in vitro. International Journal of Biological Macromolecules. Vol. 37, No. 4, pp: 195-199.
19
Ramezani-Fard, E.; Kamarudin, M.S.; Harmin, S.A. and Saad, C.R., 2012. Dietary saturated and omega‐3 fatty acids affect growth and fatty acid profiles of Malaysian mahseer. European Journal of Lipid. Science and Technology. Vol. 114, No. 2, pp: 185-193.
20
Ravi, C.; Karthiga, A. and Venkatesan, V., 2012. Isolation and biomedical screening of the tissue extracts of two marine gastropods Hemifusus pugilinus (Born, 1778) and Natica didyma (Roding, 1798). Asian Fisheries Science. Vol. 25, pp: 158-169.
21
Sachindra, N.M.; Bhaskar, N. and Mahendrakar, N.S., 2005. Carotenoids in crabs from marine and fresh waters of India. LWT-Food Science and Technology. Vol. 38, No. 3, pp: 221-225.
22
Scherer, R. and Godoy, H.T., 2009. Antioxidant activity index (AAI) by the 2, 2-diphenyl-1-picrylhydrazyl method. Food Chemistry. Vol. 112, No. 3, pp: 654-658.
23
Shakouri, A.; Shoushizadeh, M.R. and Nematpour, F., 2016. Antimicrobial Activity of Sea Cucumber (Stichopus variegatus) Body Wall Extract in Chabahar Bay, Oman Sea. Jundishapur Journal of Natural Pharmaceutical Products. (In Press).
24
Singleton, V.L. and Rossi, J.A., 1965. Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-phosphotungstic acid reagents. American Journal of Enology and Viticulture. Vol. 16, No. 3, pp: 144-158.
25
Weici, T., 1987. Chinese medicinal materials from the sea. Chinese Medicine. Vol. 1, No. 4, pp: 571-600.
26
Wen, J.; Hu, C. and Fan, S., 2010. Chemical composition and nutritional quality of sea cucumbers. Journal of the Science of Food and Agriculture. Vol. 90, No. 14, pp: 2469-2474.
27
Zaki, M.A., 2005. Effects of the crude toxin of sea cucumbers Holothuria atra on some hematological and biochemical parameters in rats. Egypt J Nat Toxins. Vol. 2, pp: 71-86.
28
Zhang, Y.; Song, S.; Song, D.; Liang, H.; Wang, W. and Ji, A., 2010. Proliferative effects on neural stem/progenitor cells of a sulfated polysaccharide purified from the sea cucumber Stichopus japonicus. Journal of Bioscience and Bioengineering. Vol. 109, No. 1, pp: 67-72.
29
Zhong, Y.; Khan, M.A. and Shahidi, F., 2007. Compositional characteristics and antioxidant properties of fresh and processed sea cucumber (Cucumaria frondosa). Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 55, No. 4, pp: 1188-1192.
30
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی بیان ژن های Caspase-1 و Interleukin-1β دخیل در کمپلکس اینفلامازوم بیماران دیالیزی مبتلا به گلومرولونفریت
گلومرولونفریت یک بیماری التهابی است که در آن تخریب گلومرولها و در نتیجه نارسایی کلیه مشاهده می گردد. یکی از اجزاء درون سلولی که فرآیند التهاب را شکل میدهد کمپلکس اینفلامازوم است که از مهم ترین ارکان سیستم ایمنی ذاتی در ایجاد التهاب میباشد. کمپلکس اینفلامازوم به دنبال شناسایی سیگنال های پاتوژنیک تحریک شده و اینترلوکین های التهابی را فعال میکند. با توجه به نقش ژنهای Caspase-1 و Interleukin-1β درتنظیم اینفلامازوم و ایجاد التهاب، بررسی میزان بیان این دو ژن در بیماران مبتلا به گلومرولونفریت، می تواند در تعیین نقش اینفلامازومها در بیماری گلومرولونفریت مفید باشد.به همین منظور، در این مطالعه 28 نمونه بیمار مبتلا به گلومرولونفریت و 28 فرد سالم بررسی شدند. پس از خونگیری از افراد، سلولهای تکهستهای خون محیطی(PBMC) جدا شده واستخراج RNA انجام شد. پس از سنتز cDNA آنالیز کمّی بیان ژن با روش Real Time PCR برای ژن های IL-1β و Casp-1 صورت پذیرفت. نتایج نشان دادبیان ژنهای IL-1βو Casp-1در سلولهای تکهستهای خون محیطی بیماران مبتلا به گلومرولونفریت دیالیزی نسبت به نمونههای کنترل متفاوت می باشد به طوری که به ترتیب بیان ژنهای Casp-1 و IL-1βدر نمونه های بیمار 1/88 (0/01>p) و 1/56(0/052 =p) برابر نمونه های کنترل میباشد که این تفاوت در مورد ژن Casp-1 معنی دار میباشد. با توجه به نتایج و نقش ژنهای IL-1βو Casp-1 در مسیر فعالسازی کمپلکس اینفالامازوم از یک طرف و افزایش بیان معنی دار این ژن ها در بیماران گلومرولونفریت در طرف دیگر، میتوان نتیجه گرفت که به احتمال زیاد بروز گلومرولونفریت از مسیر سیگنالینگ فعالسازی کمپلکس اینفالامازوم می باشد.
http://www.aejournal.ir/article_84278_784d1884ecd2035199a483b6f758b3e1.pdf
2018-09-23
477
482
گلومرولونفریت
کمپلکس اینفلامازوم
Caspase-1
Interleukin-1β
فرشید
اروجی
farshid_oruji@yahoo.com
1
گروه ژنتیک و بیوتکنولوژی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
فهیمه
باغبانی آرانی
baghbani.f@gmail.com
2
گروه ژنتیک و بیوتکنولوژی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
LEAD_AUTHOR
معصومه
مهدوی اورتاکند
masumehmahdavi@gmail.com
3
گروه زیست شناسی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
1. Anders, HJ. and Muruve, D.A., 2011. The Inflammasomes in Kidney Disease. Journal of the American Society of Nephrology. Vol. 22, No. 6, pp: 1007-1018.
1
2. Bugyei-Twum, A.; Abadeh, A.; Thai, K.; Zhang, Y.; Mitchell, M.; Kabir, G. and Connelly, K.A., 2016. Suppression of NLRP3 Inflammasome Activation Ameliorates Chronic Kidney Disease-Induced Cardiac Fibrosis and Diastolic Dysfunction. Scientific Reports. Vol. 6, No. 1, 39551 p.
2
3. Earle, D.P. and Seegal, D., 1957. Natural history of glomerulonephritis. Journal of chronic diseases. Vol. 5, No. 1, pp: 3-13.
3
4. Ferrari, D.; Pizzirani, C.; Adinolfi, E.; Lemoli, R.M., Curti, A.; Idzko, M.; Panther, E. and Di Virgilio, F., 2006. The P2X7 receptor: a key player in IL-1 processing and release. Journal of Immunology. Vol. 176, No. 7,
4
pp: 3877-3883.
5
5. Gauer, S.; Sichler, O.; Obermüller, N.; Holzmann, Y.; Kiss, E.; Sobkowiak, E.; Pfeilschifter, J.; Geiger, H.; Mühl, H. and Hauser, I.A., 2007. IL-18 is expressed in the intercalated cell of human kidney. Kidney international.
6
Vol. 72, No. 9, pp: 1081-1087.
7
6. Geldhoff, M.; Mook-Kanamori, B.B.; Brouwer, M.C.; Troost, D.; Leemans, J.C.; Flavell, R.A.; Ende, A.V.D.; Poll, T.V.D. and Diederik, V.D.B., 2013. Inflammasome activation mediates inflammation and outcome in humans and mice with pneumococcal meningitis. BMC infectious diseases. Vol. 13, No. 1, 358 p.
8
7. Granata, S.; Masola, V.; Zoratti, E.; Scupoli, M.T.; Baruzzi, A.; Messa, M.; Sallustio, F.; Gesualdo, L.; Lupo, A. and Zaza, G., 2015. NLRP3 inflammasome activation in dialyzed chronic kidney disease patients. PLoS One. Vol. 10, No. 3, e0122272 p.
9
8. Guo, H.; Callaway, J.B. and Ting, J.P., 2015. Inflammasomes: mechanism of action, role in disease, and therapeutics. Nature medicine. Vol. 21, No. 7, pp: 677-687.
10
9. Haq, M.; Norman, J.; Saba, S.R.; Ramirez, G. and Rabb, H. 1998. Role of IL-1 in renal ischemic reperfusion injury. Journal of the American Society of Nephrology. Vol. 9, No. 4, pp: 614-619.
11
10. Kanjanabuch, T.; Kittikowit, W. and Eiam-Ong, S., 2009. An update on acute postinfectious glomerulonephritis. Nature Reviews Nephrology. Vol. 5, No. 5, pp: 259-269.
12
11. Latz, E.; Xiao, T.S. and Stutz, A., 2013. Activation and regulation of the inflammasomes. Nature Reviews Immunology. Vol. 13, No. 6, pp: 397-411.
13
12. Man, S.M. and Kanneganti, T.D., 2015. Regulation of inflammasome activation. Immunological reviews. Vol. 265, No. 1, pp: 6-21.
14
13. Mogensen, T.H., 2009. Pathogen recognition and inflammatory signaling in innate immune defenses. Clinical microbiology reviews. Vol. 22, No. 2, pp: 240-273.
15
14. Mortimer, L.; Moreau, F.; MacDonald, J.A. and Chadee, K., 2016. NLRP3 inflammasome inhibition is disrupted in a group of auto-inflammatory disease CAPS mutations. Nature Immunology. Vol. 17, No. 10, pp: 1176-1186.
16
15. Mulay, S.R.; Linkermann, A. and Anders, H.J., 2015. Necroinflammation in kidney disease. Journal of the American Society of Nephrology. Vol. 27, No. 1, pp: 27-39.
17
16. Timoshanko, J.R.; Kitching, A.R.; Iwakura, Y.; Holdsworth, S.R. and Tipping, P.G., 2004. Contributions of IL-1β and IL-1α to crescentic glomerulonephritis in mice. Journal of the American Society of Nephrology. Vol. 15,
18
No. 4, pp: 910-918.
19
17. Timoshanko, J.R.; Kitching, A.R.; Iwakura, Y.; Holdsworth, S.R. and Tipping, P.G., 2004. Leukocyte derived interleukin-1β interacts with renal interleukin-1 receptor I to promote renal tumor necrosis factor and glomerular injury in murine crescentic glomerulonephritis. The American journal of pathology. Vol. 164, No. 6,
20
pp: 1967-1977.
21
18. Vezzani, A.; Moneta, D.; Richichi, C.; Aliprandi, M.; Burrows, S.J.; Ravizza, T.; Perego, C. and De Simoni, M.G., 2002. Functional role of inflammatory cytokines and antiinflammatory molecules in seizures and epileptogenesis. Epilepsia. Vol. 43, No. 5, pp: 30-35.
22
ORIGINAL_ARTICLE
ارزیابی الگوی مقاومت آنتی بیوتیکی و پتانسیل تشکیل بیوفیلم در سویه های بالینی سودوموناس آئروژینوزا
سودوموناس آئروژینوزا یکی از دلایل اصلی عفونتهای کسب شده از بیمارستان و اجتماع است و این به دلیل صفات ژنتیکی سودوموناس میباشد. اکنون به دلیل استفاده بیرویه از آنتی بیوتیکها مقاومت چند دارویی یکی از مشکلات جهانی شده است .مقاومت به دلیل ترکیبی از فاکتورهای مختلف مانندژن های مقاومت، پمپ های افلاکس و بیوفیلم میباشد. بیوفیلم باعث جلوگیری از نفوذ موثرآنتی بیوتیک ها می شود که شانس مقاومت آنتی بیوتیکی را بالا می برد. در مطالعه حاضر۶۰ سویه بالینی سودوموناس آئروژینوزا ازبیماران بستری در بیمارستان سینا گرفته شد. سویه ها به روشهای استاندارد شناسایی شدند. تست حساسیت میکروبی به روش دیسک فیوژن براساس استاندارد کربی بائر انجام شد. پتانسیل تشکیل بیوفیلم سویه ها براساس روش میکروتیترپلیت ارزیابی شد. در نهایت ارتباط بین تشکیل بیوفیلم و مقاومت آنتی بیوتیکی از طریق آزمون مربع کایبا استفاده از نرم افزار SPSS نسخه 21 بررسی گردید. سویه های سودوموناس آئروژینوزا در این مطالعه به اکثر آنتیبیوتیکها مقاوم بودند. آنالیز کمی بیو فیلم نشان داد که اکثر سویه ها بیوفیلم قوی ایجاد می کردند. تولید بیوفیلم قوی در سویه هایی که مقاومت چند دارویی داشتند به طور معنی داری بالاتر بود (0/042=p) مطالعه حاضر نشان داد که مقاومت چنددارویی با تشکیل بیوفیلم در نمونههای سودوموناس آئروژینوزا ارتباط دارد. شیوع بالای تولیدکنندههای بیوفیلم قوی و مقاومت چند دارویی در سودوموناس آئروژینوزا نشان می دهد که برنامه های پیشگیری برای جلوگیری از عفونت در بیماران در معرض خطر باید مدنظر قرار گیرد.
http://www.aejournal.ir/article_84438_99317d49d240182354aff228c3fed3bc.pdf
2018-09-23
483
488
مقاومت دارویی
تست حساسیت آنتی بیوتیکی
تشکیل بیوفیلم
سودوموناس آئروژینوزا
عطیه
رفویی
rofooie.a@gmail.com
1
گروه ژنتیک و بیوتکنولوژی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
شهره
زارع کاریزی
shohrehzare@yahoo.com
2
گروه ژنتیک و بیوتکنولوژی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
LEAD_AUTHOR
سحر
هنرمند
sahar_hj2@yahoo.com
3
گروه میکروبیولوژی، دانشکده علوم زیستی، واحد ورامین- پیشوا، دانشگاه آزاد اسلامی، ورامین، ایران
AUTHOR
قوطاسلو، ر.، 1391. بیوفیلم سودوموناس آئروژینوزا و روشهای پیشگیری و درمانهای تازه آن. دانشگاه علوم پزشکی تهران. 22 صفحه.
1
مردانه، ج.، 1391. بررسی پروفایل مقاومت آنتیبیوتیکی سویههای پسودوموناس آئروژینوزا جدا شده از بیماران بستری در بیمارستان طالقانی شهرستان اهواز. مجله دانشگاه علوم پزشکی فسا. شماره 3، 6 صفحه.
2
Abidi, S.H.; Sherwani, S.K.; Siddiqui, T.R.; Bashir, A. and Kazmi, S.U., 2013. Drug resistance profile and biofilm forming potential of Pseudomonas aeruginosa isolated from contact lenses in Karachi-Pakistan. BMC Ophthalmol. Vol. 17, No. 13, pp: 57. doi: 10.1186/1471-2415-13-57.
3
Abidi, S.H.; Sherwani, S.K.; Siddiqui, T.R.; Bashir, A. and Kazmi, S.U., 2013, Drug resistance profile and biofilm forming potential of Pseudomonas aeruginosa isolated from contact lenses in Karachi-Pakistan. BMC Ophthalmol. Vol. 17, No. 13, pp: 57-63.
4
Coban, A.Y.; Ciftci, A.; Onuk, E.E.; Erturan, Z. and Tanriverdi, C.Y., 2009, Durupinar, B., Investigation of biofilm formation and relationship with genotype and antibiotic susceptibility of Pseudomonas aeruginosa strains isolated from patients with cystic fibrosis. Mikrobiyoloji bulteni. Vol. 43, No. 4, pp: 563-573.
5
Collee, J.M. and McCartney, M., 1989. practical medical microbiology.
6
Fricks-Lima, J.; Hendrickson, C.M.; Allgaier, M.; Zhuo, H.; Wiener-Kronish, J.P.; Lynch, S.V. and Yang, K., 2011. Differences in biofilm formation and antimicrobial resistance of Pseudomonas aeruginosa isolated from airways of mechanically ventilated patients and cystic fibrosis patients. nt J Antimicrob Agents. Vol. 37, No. 4, pp: 309-315.
7
Harrison, F., 2007. Microbial ecology of the cystic fibrosis lung. Microbiology. Vol. 153, No. 4, pp: 917-923.
8
Hassan, A.; Usman J.; Kaleem, F.; Omair, M.; Khalid, A. and Iqbal, M., 2011, Evaluation of different detection methods of biofilm formation in the clinical isolates. Braz J Infect Dis. Vol. 15, No. 4, pp: 305-311.
9
Hoffman, L.R.; Deziel, E.; D’Argenio, D.A.; Lepine, F.; Emerson, J. and McNamara, S., 2006. Selection for Staphylococcus aureus small-colony variants due to growth in the presence of Pseudomonas aeruginosa. Proc Natl Acad Sci USA. Vol. 103, No. 52, pp: 19890-19895.
10
Høiby, N.A., 2017. Short history of microbial biofilms and biofilm infections. APMIS. Vol. 125, No. 4, pp: 272-275.
11
Hou, W.; Sun, X.; Wang, Z. and Zhang, Y., 2012, Biofilm Forming Capacity of Staphylococcus epidermidis, Staphylococcus aureus, and Pseudomonas aeruginosa from Ocular InfectionsBiofilm-Forming Capacity of Human Flora Bacteria. Investigative ophthalmology and visual science. Vol. 53, No. 9, pp: 5624-5631.
12
Imani Foolad, A.A.; Rostami, Z. and Shapouri R., 2010. Antimicrobial resistance and ESBL prevalence in Pseudomonas aeruginosa strains isolated from clinical specimen by phenotypic and genotypic methods. Journal of Ardabil University of Medical Sciences. Vol. 10, No. 3, pp: 189-191.
13
James, G.A.; Swogger, E.; Wolcott, R.; Pulcini, Ed.; Secor, P.; Sestrich, J.; Costerton, J.W. and Stewart, P.S., 2008. Biofilms in chronic wounds. Wound Repair Regen. Vol. 16, No. 1, pp: 37-44.
14
Jensen, P.Ø.; Kolpen, M.; Kragh, K.N. and Kühl, M., 2017. Microenvironmental characteristics and physiology of biofilms in chronic infections of CF patients are strongly affected by the host immune response. APMIS, Vol. 125, No. 4, pp: 276-288.
15
Kádár, B.; Szász, M.; Kristóf, K.; Pesti, N.; Krizsán, G. and Szentandrássy, J., 2010. In vitro activity of clarithromycin in combination with other antimicrobial agents against biofilm-forming Pseudomonas aeruginosa strains. Acta microbiologica et immunologica Hungarica. Vol. 57, No. 3, pp: 235-245.
16
Moradali, M.F.; Ghods, S. and Rehm, B.H., 2017. Pseudomonas aeruginosa Lifestyle: A Paradigm for Adaptation, Survival, and Persistence.Front Cell Infect Microbiol. Vol. 15; No. 7, pp: 39. doi: 10.3389.
17
Wayne, P., 2007. Clinical and laboratory standards institute. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing.
18
Yousefi, S.; Nahaei, M.; Farajnia, S.; Ghojazadeh, M.; Akhi, M. and Sharifi, Y., 2010, Class 1 integron and imipenem resistance in clinical isolates of Pseudomonas aeruginosa: prevalence and antibiotic susceptibility. Iranian journal of microbiology. Vol. 2, No. 3, pp: 113-119.
19
ORIGINAL_ARTICLE
شناسایی، تراکم و برآورد زیتوده جلبکهای دوتاژهای (Dinoflagella) در حوضه آبریز رودخانههای مهم شیلاتی شمال کشور
این تحقیق در فصول بهار، تابستان، پاییز و زمستان سال 1390، در 40 ایستگاه مطالعاتی از 8 نیمخط بین آستارا تا مرز حسنقلی صورت گرفت. نیمخطها در آستارا، بند رانزلی، سفیدرود، تنکابن، نوشهر، بابلسر، امیرآباد، بندر ترکمن و در حوضه جنوبی دریای خزر قرار دارند. در هر نیمخط 5 ایستگاه در اعماق 5 متر، 10 متر، 20 متر، 50 متر و 100 متر تعیین شد که نمونهبرداری فصلی از عمق صفر (سطح)، 10 متر، 20 متر، 50 متر و 100 متر توسط روتنر انجام گرفت. در مجموع 24 گونه از جلبکهای دوتاژهای (Dinoflagella) شناسایی گردید. حداکثر تراکم شاخه جلبکی فوق 17/14±28/27 در مترمکعب ×106 و حداکثر زیتوده 336±349 میلیگرم در مترمکعب مشاهده شد. بیشترین تنوع گونهای جلبکهای دوتاژهای در فصل زمستان (17 گونه) بوده است که گونههای Exuviaella cordata، Goniaulax polyedra، Peridinium achromaticum، Peridinium latum، Prorocentrum praximum و Prorocentrum scutllum در تمامی فصول مشاهده شدند. جلبکهای دوتاژهای با میانگین تراکم 17/14±28/27 (تعداد در مترمکعب ×106) و میانگین برآورد زیتوده سالانه 336±349 (میلیگرم در مترمکعب) حدودا 9% تراکم و 4% زیتوده کل پلانکتونی این منطقه را تشکیل میداد. در این مطالعه تنوع، درصد تراکم و زیتوده جلبکهای دوتاژهایتغییرات معنیداری (0/05>p) داشته است. تغییرات ادامهدار گیاهان میکروسکوپی ازجمله جلبکهای دوتاژهای میتواند بر الگوى مهاجرت ماهیان، آهنگ رشد، میزان مرگ ومیر آن ها والبته بر تراکم گازهاى حیاتى در اتمسفر تاثیر داشته باشد.
http://www.aejournal.ir/article_84927_5d3d5676702ca18b54312544ecb94e41.pdf
2018-09-23
489
494
جلبکهای دوتاژهای
تنوع
تراکم
زی توده
رودخانههای مهم شیلاتی
فاطمه سادات
تهامی
farnaztahamy@gmail.com
1
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، فرح آباد، صندوق پستی: 961
LEAD_AUTHOR
حمید
رمضانی
hamid_ramzani@yahoo.com
2
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، فرح آباد، صندوق پستی: 961
AUTHOR
مهدی
نادری
naderi_j@yahoo.com
3
پژوهشکده اکولوژی دریای خزر، موسسه تحقیقات علوم شیلاتی کشور، سازمان تحقیقات، آموزش و ترویج کشاورزی، ساری، فرح آباد، صندوق پستی: 961
AUTHOR
تهامی،ف.س.؛ پورغلام، ر.؛ نصرالهزاده، ح.؛ مخلوق، آ.؛ یوسفیان، م.؛ خداپرست، ن.؛ کیهانثانی، ع.؛ دوستدار، م.؛ نادری، م.؛ رمضانی، ح.؛ رحمتی، ر.؛ رضایی، م. و فلاحی، م.، 1392. گزارش پروژه بررسی تنوع، بیوماس و فراوانی فیتوپلانکتون در منطقه جنوبی دریای خزر. پژوهشکده اکولوژی دریای خزر. 111 صفحه.
1
حسینی، س.ع.؛ روشنطبری، م.؛ سلیمانیرودی، ع.؛ مخلوق، ا.؛ تکمیلیان، ک.؛ روحی،ا.؛ رستمیان، م.ت.؛ گنجیان، ع.؛ واردی، ا.؛ کیهانثانی، ع.؛ واحدی، ف.؛ نجفپور، ش.؛ نصرالهزاده، ح.؛ هاشمیان، ع.؛ تهامی، ف.س.؛ لالویی، ف.؛ غلامیپور، س.؛ علومی،ی. و سالاروند،غ.، 139۰. هیدرولوژی و هیدروبیولوژی حوضه جنوبی دریای خزر. موسسه تحقیقات شیلات ایران. 510 صفحه.
2
گلآقایی، م.؛ تهامی، ف.س.؛ مخلوق، ا.؛ گنجیان، ع.؛ کیهانثانی، ع.؛ دوستدار، م.؛ اسلامی، ف.؛ نصرالهتبار، ع.؛ خداپرست، ن.؛ مکرمی، ع. و پورمند، ت.م.، 1391. بررسی پراکنش فیتوپلانکتون در حوزه جنوبی دریای خزر در سال 1387. پژوهشکده اکولوژی دریای خزر.130 صفحه.
3
مکارمی، م.؛ سبکآرا، ج. و کفاشمحمدجانی، ط.، 1385. شناسایی و پراکنش فیتوپلانکتونی در مناطق مختلف تالاب انزلی و نواحی ساحلی دریای خزر. مجله علمی شیلات ایران. سال 15، شماره 1، صفحات 129 تا 149.
4
APHA, S., 2005. Standard Methods. American Public Healthassociation. Washington, DC 2005, USA. 346 p.
5
CEP. 2001. Caspian Environmental Program, Mnemiopsis workshop (Baku, 24-26 April 2001) final report; CEP Wb site: http://www.http://www Caspian environment. org/biodiversity/meeting. 307 p.
6
Clesceri, L.S.; Greenberg, A.E. and Trussell, R.R., 1989. Standard Method. American Public Health Association, Washington, U.S.A. 1444 p.
7
Du, Q.; Huang, Y. and Wang, X., 1993. Toxic dinoflagellate red tide by a Cochlodinium sp. along the coast of Fujian. China. In: (T.J. Smayda & Y. Shimizu eds), Toxic phytoplankton blooms in the sea. Elsevier, New York, USA. pp: 235-238.
8
Finenko, G.; Kideys, A.; Anensky, B.; Shiganova, T.A.; Roohi, A.; Roushantabari, M.; Rostami, H.A. and Bagheri, S., 2006. Invasive Ctenophore Mnemmiopsis leidyi in the Caspian Sea: feeding, respiration. reproduction and predatory impact on the zooplankton community. Marine Ecology Progress. pp: 171-185.
9
Hallegraeff, G.M. and Fraga, S., 1998. Bloom dynamics of the toxic dinoflagellate Gymnodinium catenatum, with emphasis on Tasmanian & Spanish coastal waters. In: (D.M. Anderson, A.D. Cembella & G.M. Hallegraeff ed.), Physiological ecology of harmful algal blooms. Vol. 41, pp: 59-80.
10
Kosarev, A.N. and Yablonskaya, E.A., 2002. The Caspian Sea. SPB. The Haque. 259 p.
11
Mason, C.F., 1998. Biology of freshwater pollution. Longman Scientific and Technical Biology. 400 p.
12
Newell, G.E. and Newell, K.C., 1977. Marin plankton. Hutchinson and Co., London, U.K. 242 p.
13
Shannon, C.E. and Weaver, W., 1963. The Mathematical Theory of Communication. University of Illinois Press, Urbana. 117 p.
14
Shiganova, T.A.; Niermann, U.; Gugu, A.; Kideys, A. and Khoroshilov, V., 1998. Changes of species diversity and their abundance in the main components of pelagic community after Mnemiopsis leidyi invasion. NATO Scientific Affairs Division in: Ecosystem Modeling as a Management Tool for the Black Sea. Kluwer Academic Publishers. pp: 171-188.
15
Tahami, F.S.; Mazlan Bin, A.G.; Negarestan, H. and Lotfi Bin, W.M., 2009. Identify of phytoplanktons in Caspian Sea waters. Conference Aquaculture 2009. Kuala Lumpur, Malaysia. 218 p.
16
Vollenweider, A.R., 1974. A manual on methods for measuring primary production in aquatic enviromantal. Blackwell scientific Publication. Oxford, london. 423 P.
17
Wetzel, R.G., 2001. Limnology. 3 eds. Academic Press, California. pp: 109-117.
18
Plotnikov, I.; Aladin, N.; Cretaux, J.F.; Micklin, Ph.; Chuikov, Yu. and Smurov, A., 2006. Biodiversity and recent exotic invasions of the Caspian Sea. Limnology. pp: 2259-2262.
19
ORIGINAL_ARTICLE
پهنهبندی احتمال خشک شدن جنگلهای استان لرستان با استفاده از مدل رگرسیون لجستیک
نابودی زیستگاه مهم ترین عامل تهدیدکننده گونهها محسوب میشود. جنگلها از مهم ترین زیستگاههای حیات وحش محسوب میشوند. براساس آخرین آمارهای رسمی سازمان جنگلها، مراتع و آبخیزداری کشور بین سالهای 1380 تا 1393 خورشیدی حدود 25 درصد کل این جنگلها دچار خشکیدگی شدهاند. شناسایی و پهنهبندی مناطق جنگلی دارای شرایط خشک شدن به منظور انجام اقدامات پیشگیرانه میتواند کمک شایانی را به حفاظت از این زیستگاههای حیاتی بکند. به همین منظور در این مطالعه از مدل رگرسیون لجستیک به همراه مناطق جنگلی دارای خشکیدگی بالای 50 درصد به عنوان متغیر مستقل و 12 عامل محیطی شامل میانگین بارندگی سالیانه، میانگین دمای سالیانه، درصد رطوبت نسبی، تبخیر و تعرق، شاخص خشکی، شاخص خشکسالی، شاخص طوفان گرد و غبار، NDVI، درصد شیب، جهت جغرافیایی، فاصله از اراضی کشاورزی و فاصله از آب های سطحی به عنوان متغیر وابسته برای شناسایی مناطق جنگلی دارای شرایط خشکیدگی استفاده شد. ROC برابر با 0/93 و Pseudo-R2 برابر با 0/33 نشان دهنده کارایی خوب مدل رگرسیون لجستیک در این مطالعه بود. نتایج نشان داد که حدود 51/3 درصد از جنگلهای استان لرستان دارای ریسک خشکیدگی هستند که از این میان 25/3 درصد احتمال خشکیدگی کم، 8/7 درصد احتمال خشکیدگی متوسط، 8/8 درصد احتمال خشکیدگی زیاد و 8/5 درصد احتمال خشکیدگی خیلی زیاد را دارا هستند. هم چنین نتایج حاکی از تاثیر بالای عوامل اقلیمی در خشکیدگی جنگل های استان لرستان بود که در این بین عوامل شاخص خشکی، تبخیر و تعرق، بارش، شاخص خشکسالی، رطوبت نسبی و دما به ترتیب مهم ترین عوامل تاثیرگذار بودند.
http://www.aejournal.ir/article_85032_21b9aa660973d249638ab4aded18d81d.pdf
2018-09-23
495
502
نابودی زیستگاه
مدل حداکثر آنتروپی
خشک شدن جنگلهای زاگرس
شاخص خشکی
امید
قدیریان
omidghadirian90@gmail.com
1
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
محمود رضا
همامی
mrhemami@cc.iut.ac.ir
2
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
LEAD_AUTHOR
علیرضا
سفیانیان
soffianian@cc.iut.ac.ir
3
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
سعید
پورمنافی
spourmanafi@cc.iut.ac.ir
4
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
منصوره
ملکیان
mmalekian@cc.iut.ac.ir
5
گروه محیط زیست، دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان، اصفهان، ایران
AUTHOR
احمدی، ش.؛ زاهدی امیری، ق. و مروی مهاجر، م.ر.، 1395. تهیه نقشه خشکیدگی بلوط ایرانی (Quercus brantii Lindl.) با استفاده از روش زمین آمار در دشت برم استان فارس. فصلنامه تحقیقات جنگل و صنوبر ایران. سال 24، شماره 3، صفحات 439 تا 450.
1
بیرانوند، ا.؛ عطارد، پ.؛ توکلی، م. و مروی مهاجر، م.ر.، 1394. زوال بوم سازگان جنگلی زاگرس؛ علل، پیامدها و راهکارها. فصلنامه جنگل و مرتع. شماره 106، صفحات 17 تا 29.
2
پروانه، ا.؛ اعتماد، و.؛ مروی مهاجر، م.ر.؛ زاهدی امیری، ق. و عطارد، پ.، 1395. بررسی ارتباط بین مقدار خشکیدگی درختان بلوط ایرانی با تیپ جنگل، خصوصیات خاک و شرایط توپوگرافی در جنگلهای قلاجه کرمانشاه. مجله جنگل ایران. سال8، شماره 3، صفحات 263 تا 275.
3
توکلی، م. و پیروزی، ف.، 1390. بررسی مقدماتی علل خشکیدگی بلوط در جنگلهای منطقه بلوران کوهدشت. همایش ملی جنگلهای زاگرس مرکزی، قابلیتها و تنگناها. لرستان.
4
توکلی، م.؛محمدی نژاد، م.ر. و پیروزی، ف.، 1391. بررسی پدیده زوال و خشکیدگی درختان بلوط Oak decline در عرصههای جنگلی استان لرستان. نخستین همایش ملی حقوق محیطزیست و منابع طبیعی زاگرس. خرمآباد.
5
ثاقب طالبی،خ.؛ساجدی،ت.ویزدیان،ق.،1383. نگاهی به جنگلهای ایران. انتشارات موسسه تحقیقات جنگلها و مراتع. 56 صفحه.
6
جزیرهای، م.ح. و ابراهیمی رستاقی، م.، 1382. جنگل شناسی زاگرس. انتشارات دانشگاه تهران. 560 صفحه.
7
حسینی، ا.، 1390. بررسی میزان آلودگی درختان به سوسکهای چوب خوار و ارتباط آن با شرایط رویشگاهی در جنگلهای بلوط ایرانی (Quercus brantii) در استان ایلام. دو فصلنامه تحقیقات حمایت و حفاظت جنگل ها و مراتع ایران. سال 9، شماره 1، صفحات 53 تا 66.
8
حسینی، ا.؛ حسینی، س.م.؛ رحمانی، ا. و آزادفر، د.، 1392. مقایسه خصوصیات محیطهای رقابتی تودههای سالم بلوط ایرانی و تودههای متاثر از زوال بلوط در استان ایلام. فصلنامه تحقیقات جنگل و صنوبر ایران. سال 21، شماره 4، صفحات 606 تا 616.
9
حمزه پور، م.؛ کیادلیری، ه. و بردبار، س.ک.، 1390. بررسی مقدماتی خشکیدگی درختان بلوط ایرانی در دشت برم کازرون، استان فارس. جنگل و صنوبر ایران. سال 19، شماره 2، صفحات 352 تا 363.
10
خسروپور، ن.؛ میرزایی، ج. و دوست کامی، س.، 1393. بررسی عوامل موثر بر خشکیدگی جنگلهای بلوط زاگرس. دومین همایش ملی منابع طبیعی ایران با محوریت علوم جنگل. کردستان.
11
عباسی، س.؛ حسینی، س.؛ پیله ور، ب. و زارع، ح.، 1388. اثر حفاظت بر تنوع زیستی گونه های چوبی در منطقه اشترانکوه لرستان. مجله جنگل ایران. سال 2، شماره 1، صفحات 1 تا 10.
12
کامیاب، ح.؛ سلمان ماهینی، ع.؛ حسینی، م. و غلامعلی فرد، م.، 1389. اتخاذ رهیافت اطلاعات محور با کاربرد روش رگرسیون لجستیک برای مدل سازی توسعه شهری گرگان. محیط شناسی. دوره 36، شماره 54، صفحات 89 تا 96.
13
عطارد، پ. و صادقی، م.، 1392. بررسی پارامترهای اقلیمی زاگرس. نخستین همایش ملی مخاطرات محیط زیست زاگرس. خرمآباد.
14
عطارد، پ.؛صادقی، س.م.م.؛طاهری سرتشنیزی، ف.؛ساروئی، س.؛عباسیان،پ.؛مسیح پور،م.؛کردستمی،ف.و دریکوندی، ا.،1394. اثرگذاری عوامل اقلیمی و تبخیر و تعرق بر زوال جنگلهای زاگرس مرکزی در استان لرستان. فصلنامه تحقیقات حمایت و حفاظت جنگلها و مراتع ایران. سال 13، شماره 2، صفحات 98 تا 114.
15
قربانلی، م.، 1381. جغرافیای گیاهی، انتشارات سمت. 316 صفحه.
16
محمدی، س. و دلاور، م.ر.، 1393. مدلسازی توسعه شهری با روش رگرسیون لجستیک مطالعه موردی: شهر سنندج. نشریه علوم و فنون نقشه برداری. دوره 4، شماره 2، صفحات 77 تا 86.
17
محمودزاده،ح.وخوشروی،ق.،1394. کاربرد رگرسیون لجستیک در مدلسازی توسعه شهری (مطالعه موردی: منطقه شهری بناب). مطالعات شهری. دوره 4، شماره 14، صفحات 31 تا 46.
18
مروی مهاجر، م.ر.،1390. جنگلشناسی و پرورش جنگل. انتشارات دانشگاه تهران. 420 صفحه.
19
مهدوی، ع.؛ میرزایی، ج. و کرمی، ا.، 1393. وضعیت درختان خشکیده در جنگلهای زاگرس (مطالعه موردی: جنگل های منطقه بیوره استان ایلام). نشریه توسعه پایدار جنگل ها. سال 4، شماره 1، صفحات 329 تا 340.
20
مهدوی، ع.؛ میرزایی زاده، و.؛ نیک نژاد، م. و کرمی، ا.، 1394. بررسی و پیشبینی زوال درختان بلوط با استفاده از مدل رگرسیون لجستیک (جنگل های بیوره ملکشاهی). فصلنامه تحقیقات حمایت و حفاظت جنگلها و مراتع ایران. سال 13، شماره 1، صفحات 20 تا 32.
21
میرزادی، ز.؛ پیله ور، ب.؛ علی جانی، و. و ویس کرمی، ز.، 1391. بررسی لیست فلورستیک و تنوع گیاهی جنگلهای شوراب در استان لرستان. اولین همایش ملی حفاظت و برنامهریزی محیط زیست. همدان.
22
نادی، م.؛جامعی، م.؛ بذرافشان، ج. و جنت رستمی، س.، 1391. ارزیابی روشهای مختلف درونیابی دادههای بارندگی ماهانه و سالانه (مطالعه موردی، استان خوزستان). پژوهشهای جغرافیای طبیعی. شماره 44، صفحات 117 تا 130.
23
Beier, CM.; Sink, S.E.; Hennon, P.E.; D’Amore, D.V. and Juday, G.P., 2008. Twentieth century warming and the dendroclimatology of declining yellow cedar forests in southeastern Alaska. Canadian Journal of Forest Research. Vol. 38, pp: 1319-1334.
24
Bigler, C.; Barker, O.U.; Bugmann, H.; Dobbertin, M. and Rigling, A., 2006. Drought as an inciting mortality factor in Scots pine stands of the Valais, Switzerland. Ecosystems. Vol. 9, pp: 330-343.
25
Das, A.J.; Battles, J.; Van Mantgemd, P.J. and Stephenson, N.L., 2008. Spatial elements of mortality risk in old-growth forests. Ecology. Vol. 89, pp: 1744-1756.
26
Espadafor, M.; Lorite, I.J.; Gavilan, P. and Berengena, J., 2011. An analysis of the tendency of reference evapotranspiration estimates and other climate variables during last 45 years in Southern Spain. Agricultural Water Management. Vol. 98, pp: 1045-1061.
27
Farmer, A., 1993. The effects of dust on vegetation-a review. Environmental Pollution. Vol. 79, pp: 63-75.
28
Franklin, J.F.; Shugart, H.H. and Harmon, M.E., 1987. Tree death as an ecological process. Bioscience. Vol. 37, pp: 550-556.
29
Guarin, A. and Taylor, A.H., 2005. Drought triggered tree mortality in mixed conifer forests in Yosemite National Park, California, USA. Forest ecology and management. Vol. 218, pp: 229-244.
30
Harrison, P.A.; Berry, P.M.; Butt, N. and New, M., 2006. Modeling climate change impacts on species’ distributions at the European scale: implications for conservation policy. Environmental Science and Policy. Vol. 9, pp: 116-128.
31
He, Z. and Lo, C., 2007. Modeling urban growth in Atlanta using logistic regression. Computers, Environment and Urban Systems. Vol. 31, No. 6, pp: 667-688.
32
Keenan, J.R.; Reams, G.R.; Achard, F.; de Freitas, V.J.; Grainger, A. and Lindquist, E., 2015. Dynamics of global forest area: Results from the FAO Global Forest Resources Assessment 2015. Forest Ecology and Management. Vol. 352, pp: 9-20.
33
Koprowski, L.J.; Gavish, L. and Doumas, S.L., 2016. Sciurus anomalus. Mammalian Species. Vol. 48, No. 934, pp: 48-58.
34
Mackee, B.; Nolan, T.; Dooesken, J. and Kleist, J., 1995. Drought monitoring with multiple timescale. Conference on Applied Climatology. Bostun.
35
Newbery, D.M. and Lingenfelder, M., 2009. Plurality of tree species responses to drought perturbation in Bornean tropical rain forest. Plant Ecology. Vol. 201, pp: 147-167.
36
O’Loingsigh, T.; McTainsh, G.H.; Tews, E.K.; Strong, C.L.; Leys, J.F.; Shinkfield, P. and Tapper, N.J., 2014. The Dust Storm Index (DSI): A method for monitoring broadscale wind erosion using meteorological records. Aeolian Research. Vol. 12, pp: 29-40.
37
Segan, D.B.; Murray, K.A. and Watson, J.E, 2016. A global assessment of current and future biodiversity vulnerability to habitat loss-climate change interactions. Global Ecology and Conservation. Vol. 5, pp: 12-21.
38
UNEP (United Nations Environment Programme). 1997. World atlas of desertification 2ED. UNEP, London.
39
Walther, G.R.; Post, E.; Convey, P.; Menzel,A.; Parmesan, C.; Beebee, T.J.C.; Fromentin, J.M.; Hoeghguldberg, O. and Bairlein, F., 2002. Ecological responses to recent climate change. Nature. Vol. 416, pp: 389-395.
40