اثر القای تریپلوئیدی با استفاده از شوک گرمایی بر میزان تفریخ، بقاء و تریپلوئیدی در لارو ماهی کوی (Cyprinus carpio)

نوع مقاله: فیزیولوژی (جانوری)

نویسندگان

1 گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان، گرگان، ایران

2 گروه شیلات، دانشکده علوم کشاورزی و منابع طبیعی، دانشگاه گنبد کاووس، گنبد کاووس، ایران

چکیده

هدف از این آزمایش بررسی اثر شوک گرمایی روی القای تریپلوئیدی در ماهی کوی (Cyprinus carpio) بود. 3 دمای شوک (38، 40 و 42 درجه­ سانتی ­گراد)، 5 مدت زمان آغاز شوک (1، 2، 4، 6 و 8 دقیقه پس از لقاح) و 3 مدت زمان شوک (1، 2 و 3 دقیقه) مورد آزمایش قرار گرفتند. گروهی از تخم­ ها به ­عنوان گروه شاهد درنظر گرفته شد. تعداد تیمارها به ­همراه گروه شاهد 46 تیمار بود. نتایج آزمایش نشان داد بیش ­ترین میزان تفریخ (59/49 درصد) در تیمارهای 19 (دمای 38 درجه­ سانتی ­گراد، 4 دقیقه پس از لقاح، مدت زمان 1 دقیقه)، 10 (دمای 38 درجه سانتی­ گراد، 2 دقیقه پس از لقاح، مدت زمان 1 دقیقه) و 28 (دمای 38 درجه­ سانتی­ گراد، 6 دقیقه پس از لقاح، مدت زمان 1 دقیقه) به دست آمد، در حالی ­که بین این تیمارها و گروه شاهد اختلاف معنی ­داری وجود نداشت (0/05<P). هم ­چنین میزان بقاء لاروها با افزایش دمای شوک و مدت زمان شوک به ­طور معنی­ داری کاهش یافت (0/05>P). بیش ­ترین میزان تریپلوئیدی (65/95 درصد) و بازده تریپلوئیدی (63/75 درصد) در دمای 40 درجه­ سانتی ­گراد، 6 دقیقه پس از لقاح و مدت زمان 2 دقیقه (تیمار 32) مشاهده شد. نسبت حجم گلبول قرمز و هسته­ آن در ماهیان تریپلوئید به ­ترتیب 2/74 و 1/92 برابر ماهیان دیپلوئید بود. با توجه به نتایج به ­نظر می ­رسد استفاده از شوک گرمایی با دمای 40 درجه­ سانتی ­گراد، 6 دقیقه پس از لقاح و مدت زمان 2 دقیقه می­ تواند بیش ­ترین تاثیر را در القای تریپلوئیدی در ماهی کوی داشته باشد.

کلیدواژه‌ها


  1. تیموریان، س.ا.ب.، 1395. بررسی تاثیر پروبیوتیک لاکتوباسیلوس اسیدوفیلوس Lactobacillus acidophilus بر شاخص ­های رشد ماهی کویی. پایان­ نامه دکتری رشته دامپزشکی، دانشکده دامپزشکی. دانشگاه آزاد اسلامی کرج.
  2. خیابانی، ع.ر.، 1394. مروری بر نحوه پیدایش و تکامل ماهی کوی (کپور زینتی) امروزی. آبزیان زینتی. سال 2، شماره 1، صفحات 37 تا 42.
  3. مورکی، ن.؛ دادگر، ش. و نادری، م.ص.، 1393. اثر گیاه جعفری (Petroselinum sativum) بر شاخص رشد و بقای ماهی کوی (Cyprinus carpio). نشریه توسعه آبزی ­پروری. سال 8، شماره 2، صفحات  63 تا 72.
  4. مومنی ­نژاد، ع.، 1392. القاء تکثیر در کپور کوی (Cyprinus carpio) با استفاده از هورمون HCG و ترکیب Ovaprim. پایان ­نامه کارشناسی­ ارشد مهندسی منابع طبیعی، تکثیر و پرورش آبزیان. دانشکده منابع طبیعی، دانشگاه صنعتی اصفهان.
  5. Aruljothi, K., 2015. Mass production of triploid Rohu, Labeo rohita (Ham.) by chromosome manipulation technique.Thesis submitted in part fulfillment of the requirements for the Degree of Master of Fisheries Science in Fish Biotechnology, university of Tamil Nadu, Nagapattinam.
  6. Basavaraju, Y.; Mair, G.C.; Mohan Kumar, H.M.; Pradeep Kumar, S.; Keshavappa, G.Y. and Penman, D.J., 2002. An evaluation of triploidy as a potential solution to the problem of precocious sexual maturation in common carp, Cyprinus carpio, in Karnataka, india. Aquaculture. Vol. 204, pp: 407-418.
  7. Bencsik, I.; Pacala, N.; Dumitrescu, G.; Dronca, D.; Stanculet, J. and Petculescu, C., 2013. Triploidy determination in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) based on erythrocytes dimensions. Animal Science and Biotechnologies. Vol. 46, pp: 113-117.
  8. Benfey, T.J.; Sutterlin, A.M. and Thompson, R.J., 1984. Use of erythrocyte measurement to identify triploid salmonid. Canadian j. fish. Aquatic sci. Vol. 41, pp: 980-984.
  9. Billard, R.; Richard, M. and Breton, B., 1977. Stimulation of gonadotropin secretion after castration in rainbow trout. Gen. and compar. Endocrin. Vol. 33, pp: 163-165.
  10. Chalmers, L.; Thompson, K.D.; Taylor, J.F.; Black, S.; Miguad, H.; North, B. and Adams, A., 2016. A comparison of the response of diploid and triploid Atlantic salmon (Salmo salar) siblings to a commercial furunculosis vaccine and subsequent experimental infection with Aeromonas salmonicida. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 57, pp: 301-308.
  11. Coyle, S.D.; Durborow, R.M. and Tidwell, J.H., 2004. Anesthetics in aquaculture, publication 3900, Stoneville, Mississippi: southern regional aquaculture center.
  12. Das, S.K., 2004. Evaluation of a new spawning agent, ovopel in induce breeding of indian Carps. Asian fish. Sci. Vol. 17, pp: 313-32.
  13. Dillon, J.C., 1988. Production of triploid Rainbow Trout for evaluation in south Dakota waters. A thesis submitted in partial fulfillment of the requirements for the degree master of science, major in wildlife and fisheries sciences (fisheries option), university of South Dakota State.
  14. Felip, A.; carrillo, M.; Herráez, M.P.; Zanuy, S. and Basurco, B., 2009. Protocol F - Induction of triploidy by cold shock, Pratical guide of protocols: chromosome set manipulation. Options méditerranéennes: Série B. Etudes et Recherches. No. 63, pp: 43-48.
  15. Hassanzadeh saber, M. and Pourkazemi, M., 2012. Induction of triploidy in grass carp Ctenopharyngodon idella (Valenciennes, 1844), Comparison of cold and heat shocks. Caspian journal of environmental sciences. Vol. 10, No. 2, pp: 195-204.
  16. Havardstun, S., 2011. Triploid induction in Atlantic cod (Gadus morhua L.) by the use of different pressure levels. Thesis for fulfilment of the degree master of science in aquaculture biology, university of Bergen, Norwey.
  17. Karal Marx, K. and Sukumaran, N., 2007. Production of triploid African catfish, Clarias gariepinus (Burchell), using chromosome manipulation techniques. Bangladesh journal of fish research. Vol. 2, No. 11, pp: 121-130.
  18. Lemoine, L.H. and Smith, T.L., 1980. Ploploidy induced in brook trout by cold shock. Trans Am Fish Soc. Vol. 109, pp: 626-631.
  19. Nascimento, N.F.; Pereira-Santos, M.; Piva, L.H.; Manzini, B.; Fujimoto, T.; Senhorini, J.A.; Yasui, G.S. and Nakaghi, L.S.O., 2017. Growth, fatty acid composition, and reproductive parameters of diploid and triploid yellowtail tetra Astyanax altiparanae. Aquaculture. Doi: 10.1016/j. aquaculture.2017.01.007.
  20. Olele, N.F. and Tighiri, O.H., 2013. Optimization of triploidy induction and growth performance of Clarias anguillarias (African catfish) using cold shock. Academic journal of interdisciplinary studies. Vol. 2, No. 7, pp: 189-196.
  21. Pushpa Geetha. S. and Jayaprakas, V., 2014.  Growth performance, Reproductive sterility and distinct morphology of Triploid fringed lipped Carp, Labeo fimbriatus. J. Aquat. Biol.Fish. Vol. 1, No. 2, pp: 201-214.
  22. Perruzi, S.; Kettunen, A.; Primicerio, R. and Kauric, G., 2007. Thermal shock induction of triploidy in Atlantic cod (Gadus morhua L.). Aquaculture research. Vol. 38, pp: 926-932.
  23. Piferrer, F.; Beaumont, A.; Falguière, M.; Haffray, P. and Colombom, L., 2009. Polyploid fish and shellfish: Production, biology and applications to aquaculture for performance improvement and genetic containment. Aquaculture. Vol. 293, pp: 125-156.
  24. Pradeep, P.J.; Srijaya, T.C.; Bahuleyan, A.; Renjithkumar, C.R.; Jose, D.; Papini, A. and Chatterji, A.K., 2012. Triploidy induction by heat-shock treatment in red Tilapia, caryologia: international journal of cytology. Vol. 65, No. 2, pp: 152-156.
  25. Recoubratsky, A.; Gomelsky, B.I.; Emelyanova, O.V. and Pankratyeva, E.V., 1992. Triploid common carp produced by heat shock with industrial fish-farm technology. Aquaculture. Vol. 108, pp: 13-19.
  26. Strunjak-Perovic, I.; Coz-Rakova, R. and Topic Povovic, N., 2003. Micronucleus occurrence in diploid and triploid rainbow trout (Oncorhynchus mykiss Walbaum). Vet. Med.  Czech. Vol. 48, pp: 215-219.
  27. Seraki, K.; Kobayasi, H. and Nakamura, M., 1977. Size of Erythrocytes in the Diploid and Triploid Specimens of Carassius auratus langsdorfi. Japanese Journal of Ichthyology. Vol. 24, pp: 135-140.
  28. Taylor, G.F.; Bozzolla, P.; Frenzl, B.; Matthew, C.; Hunter, D. and Migaud, H., 2014. Triploid Atlantic salmon growth is negatively affected by communal ploidy rearing during seawater grow-out in tanks. Aquaculture. Vol. 432, pp: 163-174.
  29. Thorgaard, G.H.; Jazwin, M.E. and Stier, A.R., 1981. Polyploidy induced by heat shock in rainbow trout. Transactions of the American fisheries society. Vol. 110, pp: 546-550.
  30. Thorgaard, G.H., 1983. Chromosome set manipulation and sex control in fish. 405-434. In: WH Hoar, DG Randall and EM Donaldson (eds) fish physiology, academic press, Newyork. USA.
  31. Turan, F. and Guragac, R., 2014. Induction of triploidy with caffeine treatment in the African catfish (Clarias gariepinus). Iranian journal of fisheries sciences. Vol. 4, No. 13, pp: 1014-1020.
  32. Uma, B. and Chandran, M.R., 2008. Induction of triploidy in Gymnocorymbus ternetzi (Boulengar). Research journal of fisheries and hydrobiology. Vol. 2, No. 3, pp: 41-47.