اثرات مورفین سولفات بر سطح گلوتامات هیپوتالاموسی و غلظت سرمی هورمون LH در موش های صحرایی نر

نوع مقاله: فیزیولوژی (جانوری)

نویسندگان

1 دانشگاه شهید بهشتی، دانشکده علوم زیستی، ایران، تهران

2 دانشگاه محقق اردبیلی، دانشکده علوم ، گروه زیست شناسی، ایران، اردبیل

چکیده

مورفین از طریق تاثیر بر فعالیت مسیرهای نورونی واسطه ­ای مختلف داخل هیپوتالاموسی اثرات مهاری بر ترشح هورمون­ LH اعمال می­ کند. در تحقیق حاضر، اثرات مورفین سولفات بر ترشح LH از طریق مسیر گلوتاماترژیک در موش ­های صحرایی نر بررسی گردید. بیست موش صحرایی نر بالغ نژاد ویستار به وزن 250-200 گرم در چهار گروه (در هر گروه 5=n) قرار گرفته، گروه ­های 1 و 2 سالین و گروه ­های 3 و 4 یک میکروگرم مورفین را از طریق تزریق درون بطنی مغزی دریافت کردند. در گروه ­های 1 و 3 نمونه­ های خونی قبل از تزریق و 30 دقیقه بعد از تزریق سالین یا مورفین جمع ­آوری و نمونه­ های هیپوتالاموسی جدا گردید. در گروه­ های 2 و 4 نمونه­ های خونی قبل از تزریق و 60 دقیقه بعد از تزریق سالین یا مورفین جمع­ آوری و نمونه­ های هیپوتالاموسی جدا گردید. غلظت سرمی هورمون LH با روش رادیوایمونواسی (RIA) و سطوح گلوتامات هیپوتالاموسی با استفاده از کروماتوگرافی مایع با کارایی بالا (HPLC) اندازه­ گیری شد. مورفین میانگین غلظت سرمی LH را در 30 یا 60 دقیقه بعد از تزریق در مقایسه با قبل از تزریق کاهش داد که این میزان کاهش تنها در گروه 60 دقیقه از نظر آماری معنی ­دار بود. هم­ چنین، با تزریق مورفین میانگین غلظت گلوتامات هیپوتالاموس در 30 دقیقه بعد از تزریق در مقایسه با گروه 30 دقیقه بعد از تزریق سالین از نظر آماری به ­طور معنی ­داری کاهش یافت. کاهش فعالیت نورون­ های گلوتاماتی هیپوتالاموس ممکن است در مسیرهای عصبی کنترل­ کننده اثرات مورفین بر ترشح LH دخالت داشته باشد.

کلیدواژه‌ها


  1. Ahmad, I. and Pleuvry, B.J., 1955. Interactions between opioid drugs and. propofol in laboratory Bartosz B, Grzegorz H (2009). Effects of morphine and methadone treatments on glutamatergic transmission in rat frontal cortex. Pharmacological Reports. Vol. 61, No. 6, pp: 1192-1197.
  2. Beltran-Campos, V.; Silva-Vera, M.; García-Campos, M.L. and Díaz-Cintra, S., 2015. Effects of morphine on brain plasticity. Neurologia. Vol. 30, No. 3, pp: 176-80.
  3. Ceccarelli, I.; De Padova, A.M.; Fiorenzani, P.; Massafra, C. and Aloisi, A.M., 2006. Single opioid administration modifies gonadal steroids in both the CNS and plasma of male rats. Journal of Neuroscience. Vol. 140, pp: 929-937.
  4. Eyigor, O.; Centers, A. and Jennes, L., 2001. Distribution of ionotropic glutamate receptor subunit mRNAs in the rat hypothalamus. Journal of Comparative Neurology. Vol. 434, pp: 101-124.
  5. Fayez, M.; Ahmed, H.H.; el Nabarawy, F.; Shokery, I.M. and Bauomy, A.M., 1991. Effects of butorphanol on luteinizing hormone and follicle stimulating hormone levels in ovariectomized rats comparative study with morphine sulphate. Archive for Experimental Veterinary Medicine. Vol. 45, pp: 101-103.
  6. Gurjinder, K. and Gurcharan, K., 2001. Role of cholinergic and GABAergic neurotransmission in the opioids-mediated GnRH release mechanism of EBP-primed OVX rats. Molecular and Cellular Biochemistry. Vol. 219, pp: 13-19.
  7. He, D.; Mitsushima, D.; Uemura, T.; Hirahara, F.; Funabashi, T.; Shinohara, K. and Kimura, F., 2000. Effects of naloxone on the serum luteinizing hormone level and the number of Fos-positive gonadotropin-releasing hormone neurons in immature female rats. Brain Research. Vol. 85, pp: 129-135.
  8. Kreeger, J.S.; Yukhananov, A.A. and Larson, Y.R., 1955. Altered N-Methyl-D- aspartate (NMDA) activity in the mouse spinal cord following morphine is mediated by sigma activity. Brain Research. Vol. 672, pp:  83-88.
  9. Law, P.Y.; Wong, Y.H. and Loh, H.H., 2000. Molecular mechanisms and regulation of opioid receptor signaling. Annual Review of Pharmacology and Toxicology. Vol. 40, pp: 389-430.
  10. Pages, N.; Orosco, M.; Fournier, G.; Rouch, C.; Hafi, A.; Gourch, A.; Comoy, E. and Bohuon, C., 1991. The effects of chronic administration of morphine on the levels of brain and adrenal catecholamines and neuropeptide Y in rats. General Pharmacology. Vol. 22, pp: 943-947.
  11. Mahmoudi, F.; Khazali, H. and Janahmadi, M., 2014. Molecular interactions of kisspeptin/GPR54 signaling system and morphine on LH hormone secretion in wistar rats. International Journal of Fertility and Sterility. Vol. 8, No. 2, pp: 215-220.
  12. Mustafa, S.; Hashim, W.; Khaliq, S. and Azizuddin Khan, R.A., 2014. An improved high performance liquid chromatographic method for tryptophan analysis in rat brain administrated by seaweed. Journal of Analytical and Bioanalytical Techniques. Vol. 5, pp: 188.
  13. Pasternak, G.W., 1993. Pharmacological mechanisms of opioid analgesics. Clinical Neuropharmacology. Vol. 16, No. 1, pp: 1-18.
  14. Mahmoudi, F.; Khazali, H. and Janahmadi, M., 2014. Interactions of morphine and peptide 234 on mean plasma testosterone concentration. International Journal of Endocrinology and Metabolism. Vol. 12, No. 1, pp: 1-5.
  15. Schwendt, M. and Jezova, D., 2001. Gene expression of NMDA receptor subunits in rat adrenals under basal and stress conditions. Journal of Physiology and Pharmacology. Vol. 52, No. 4, pp: 719-727.
  16. Sherman, A.D. and Gebhart, G.F., 1976. Morphine and pain: Effects on aspartate, gaba and glutamate in four discerete areas of mouse brain. Brain Research. Vol. 110, No. 2, pp: 273-281.
  17. Silva-Moreno, A.; Gonzales-Espinosa, C.; Leon-Olea, M. and Cruz, S.L., 2012. Synergistic antinociceptive actions aand tolerance development produced by morphine-fentanyl coadministration: Correlation with μ-opioid receptor internalization. European Journal of Pharmacology. Vol. 674, No. 2-3, pp: 239-247.
  18. Xu, B.; Sahu, A.; Kalra, P.S.; Crowley, W.R. and Kalra, S.P., 1996. Disinhibition from opioid influence augments hypothalamic neuropeptide Y (NPY) gene expression and pituitary luteinizing hormone release: effects of NPY messenger ribonucleic acid antisense oligodeoxynucleotides.  Endocrinology. Vol. 137, No. 1, pp: 78-84.
  19. Yamamoto, R.T. and Kanarek, R.B. 2014. Central and peripheral relationships between morphine and glucose on antinociception in rats. Annals of Neurosciences. Vol. 1, No. 3, pp: 1-6.