بهبود فراسنجه های کیفی اسپرم منجمد-یخ گشایی شده قوچ با افزودن عصاره نعناع فلفلی در رقیق کننده

نوع مقاله : فیزیولوژی (جانوری)

نویسندگان

گروه علوم دامی، دانشکده کشاورزی و منابع طبیعی مغان، دانشگاه محقق اردبیلی، اردبیل، ایران

چکیده

هدفاینپژوهشبررسیتأثیر عصارهگیاهنعناع فلفلیبه ­عنوان یکآنتی­ اکسیدانطبیعیبرکیفیتاسپرممنجمد-یخ­گشاییشدهقوچبود. برای این منظور از چهار رأس قوچ مغانی هفته ‏ای دو بار اسپرم‏ گیری شد و انزال­ ها به­ طور یکسان باهم مخلوط شدند. سپس نمونه‏ ها با رقیق‏ کننده حاوی سطوح مختلف عصاره نعناع فلفلی (0، 2، 4، 8، 12 و 16 میلی ­لیتر در دسی ­لیتر محلول رقیق­ کننده) رقیق شدند. نمونه ­هاپسازطیمراحلسردسازیو انجمادتازمانارزیابیدرداخلازتمایعنگه­ داریشدند. بعد از یخ‏ گشایی، پارامترهای تحرک به ­وسیله سیستم کاسا، زنده‏ مانی به ­روش رنگ‏ آمیزی ائوزین-نیگروزین و تست یکپارچگی غشایی با محلول هیپواسموتیک مورد بررسی قرار گرفت. نتایج نشان داد که افزودن عصاره در سطوح 4 و 8 میلی ­لیتر، درصد تحرک کلی اسپرم ­ها را افزایش داد (0/05<P). هم­ چنین غلظت 4 میلی­ لیتر عصاره به­ طور معنی ­داری تحرک پیش ­رونده اسپرم ­ها را نسبت به گروه شاهد و گروه ­های تیماری حاوی سطوح بالاتر بهبود داد (0/05<P). در رقیق­ کننده حاوی 8 میلی ­لیتر عصاره، درصد صفات LIN، STR و VSL بالاتر بود (0/05<P). هم چنین افزودن سطوح 4 و 8 میلی ­لیتر عصاره، پارامترهای VCL و VAP را بهبود داد (0/05<P). سطوح 4 و 8 میلی ­لیتر عصاره، درصد زنده­ مانی ویکپارچگی غشای پلاسمایی اسپرم ­ها را نسبت به گروه شاهد بهبود داد (0/05<P)، اما ریخت‎شناسیاسپرم­ ها تحت تاثیر تیمارها قرار نگرفت. در نتیجه استفاده از عصاره نعناع فلفلی در رقیق‏ کننده منی منجر به بهبود کیفیت اسپرم منجمد-یخ­ گشایی شده قوچ شد که این اثر وابسته به دوز بود.

کلیدواژه‌ها

عنوان مقاله [English]

Improvement in frozen-thawed ram sperm quality parameters by adding Mentha piperita L. extract in extender

نویسندگان [English]

  • Vahid Vahedi
  • Nemat Hedayat Evrigh
Department of Animal Science, Faculty of Agriculture and Natural Resources, Moghan, Mohaghegh Ardebil University, Ardebil, Iran
چکیده [English]

The aim of current study was to evaluate the effect of Mentha piperita extract as a natural antioxidant on quality of frozen-thawed ram sperm. In this study, four Moghani ram were used for semen collection twice a week. Then semen samples were pooled and diluted with extenders supplemented with different concentrations of Mentha piperita extracts (0, 2, 4, 8, 12 and 16 mL per dL diluent solutions). Following cooling and freezing, semen samples were stored in liquid nitrogen until evaluation. After thawing, the sperm dynamic parameters were evaluated using CASA system. The results showed that the addition of 4 and 8ml/dl extracts resulted in higher (p < 0.05) percentages of total motility compared to control. Addition of 4 ml/dl extract improved progressive motility compared to control group and higher levels of extract groups (P <0.05). The percentages of LIN, STR and VSL were higher (P<0.05) in the extender containing 8 mL/dL extract. Addition of 4 and 8 mL/dL extract to the extender significantly (P<0.05) improved VCL and VAP parameters. Addition of 4 and 8ml/dl extract improved the percentage of viability and sperm plasma membrane integrity compared to control (P <0.05). Sperm morphology was not affected by treatments. In conclusion, supplementation of extender with Mentha piperita L. extract improves post-thawed ram sperm quality in a dose dependent manner.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Antioxidant effect
  • Mentha piperita extract
  • Ram semen
  • Freeze-thawing

مراجع

  1. Agarwal, A.; Nallella, K.P.; Allamaneni, S.S. and Said, T.M., 2004‎. Role of antioxidants in ‎treatment of male ‎infertility: an overview of the literature. Reproductive BioMedicine Online. Vol.‎ 8, pp: 616-627. ‎
  2. Aitken, R.J. and Sawyer, D., 2003. The human spermatozoon not waving but drowning. Advances in Experimental Medicine and Biology. Vol. 518, pp: 85-98.
  3. Andrabi, S.M.H., 2007. Fundamental principles of cryopreservation of Bos taurus and Bos indicus bull spermatozoa. Mini review. Int. International Journal of Agriculture and Biology. Vol. 9, pp: 367-369.
  4. Arora, A.; Nair, G.M. and Strasburg, M.G., 1998. Structure activity relationships for antioxidant activities of a series of flavonoids in a liposomal system. Free Radical Biology & Medicine. Vol. 24, pp: 1355-1363.
  5. Bailey, J.L.; Bilodeau, J.F. and Cormier, N., 2000. Semen cryopreservation in domestic animals: A damaging and capacitating phenomenon. Journal of Andrology. Vol. 21, pp: 1-7.
  6. Bilodeau, J.F.; Chatterjee, S.; Sirard, M.A. and Gagnon, C., 2000. Levels of antioxidant ‎defenses are decreased in bovine spermatozoa after a cycle of freezing and thawing. MolecularReproduction and Development. Vol. 55, pp: 282-288.
  7. Blokhina, O.; Virolainen, E. and Fagerstedt, K.V., 2003. Antioxidants, oxidative damage and oxygen deprivation stress: a review. Annals of Botany. Vol. 91, 179 p.
  8. Chatterjee, S.; Lamirande, E. and Gagnon, C., 2001. Cryopreservation alters membrane ‎sulfhydryl ‎status of bull spermatozoa: protection by oxidized glutathione. Molecular Reproduction and Development. Vol. 60, pp: 498-506.
  9. Clulow, J.R.; Mansfield, L.J.; Morris, L.H.A.; Evans, G. and Maxwell, W.M.C., 2008. A comparison between freezing methods for the cryopreservation of stallion spermatozoa, Animal Reproduction Science. Vol. 108, pp: 298-308.
  10. Daghigh Kia, H.; Farhadi, R.; Ashrafi, I. and Mehdipour, M., 2016. Anti-oxidative effects of ethanol extract of origanum vulgare on kinetics, microscopic and oxidative parameters of cryopreserved Holstein bull spermatozoa. Iranian Journal of Applied Animal Science. Vol. 6, No. 4, pp:783-789.
  11. Daghigh Kia, H.; Olfati-Karaji, R.; Hoseinkhani, A. and Ashrafi, I., 2014. Effect of rosemary (Rosmarinus officinalis) extracts and glutathione antioxidants on bull semen quality after cryopreservation. Spanish Journal of Agricultural Research. Vol. 17, No. 12, pp: 98-105.
  12. Hadian, J.; Ghasemnezhad, M. and Ranjbar, H., 2008. Antifungal potency of some essential oils in control of postharvest decay of strawberry caused by Botrytis cinerea, Rhizopus stolonifer and Aspergillus niger. Journal of Essential Oil Research. Vol. 11, pp: 553-562.
  13. Hammerstedt, R.H.; Graham, J.K. and Nolan, J.P., 1990. Cryopreservation of mammalian sperm: what we ask them to survive. Journal of Andrology. Vol. 11, pp: 73-88.
  14. Javanmardi, J.; Stushnoffb, C.; Lockeb, E. and Vivancob, J.M., 2003. Antioxidant activity and total phenolic content of Iranian Ocimum accessions. Food Chemistry. Vol. 83, pp: 547-555.
  15. Khodaei Motlagh, M.; Sharafi, M.; Zhandi, M.; Mohammadi-Sangcheshmeh, A.; Shakeri, M.; Soleimani, M. and Zeinoaldini, S., 2014. Antioxidant effect of rosemary (Rosmarinus officinalis L.) extract in soybean lecithin-based semen extender following freeze thawing process of ram sperm. Cryobiology. Vol. 69, pp: 217–222
  16. Kurşat, M.; Emre, I.; Yilmaz, Ӧ. and Erecevit, P., 2011. Antioxidant and antimicrobial activity in the seeds of Origanum vulgare L. subsp. gracile (C. Koch) Ietswaart and Origanum acutidens (Hand. -Mazz.) Ietswaart from Turkey. Grasas y Aceites. Vol. 62, No, 4, pp: 410-417.
  17. Lessard, C.; Parent, S.; Leclerc, P.; Bailey, J.L. and Sullivan, R., 2000. Cryopreservation Alters the Levels of the Bull Sperm Surface Protein P25b. Journal of Andrology. Vol. 21, pp: 700-707.
  18. Lotfipour, F.; Samiee, M. and Nazemiyeh, H., 2007. Evaluation of the antibacterial activity of Salvia sahendica and Phlomis caucasica. Pharmaceutical sciences, Journal of Faculty of Pharmacy, Tabriz University of Medical Sciences. Vol. 1, pp: 29-34.
  19. Malo, C.; Gil, L.; Gonzalez, N.; Martínez, F.; Cano, R.; de Blas, I. and Espinosa, E., 2010. Anti-oxidant supplementation improves boar sperm characteristics and fertility after cryopreservation: comparison between cysteine and rosemary (Rosmarinus officinalis). Cryobiology. Vol. 61, pp: 142-147.
  20. Malo, C.; Gil, L.; Cano, R.; Martínez, F. and Galé, I., 2011. Antioxidanteffect of rosemary ‎‎(Rosmarinus ‎officinalis) on boar epididymal spermatozoa during cryopreservation. ‎Theriogenology. Vol. 75, pp: 1735-1741. ‎
  21. Rice-Evans, C.; Miller, N.J. and Paganga, G., 1997. Antioxidant properties of phenolic compounds. Trends in Plant Sciences. Vol. 2, pp: 152-159.
  22. Roca, J.; Gil, M.A.; Hernandez, M.; Parrilla, I.; Vazquez, J.M. and Martinez, E.A., 2004. Survival and fertility of boar spermatozoa after freeze–thawing in extender supplemented with butylated hydroxytoluene. Journal of Andrology. Vol. 25, pp: 397-405.
  23. Sikka, S.C., 2001. Relative impact of oxidative stress on male reproductive function. Current Medicinal Chemistry. Vol. 8, pp: 851-862. ‎
  24. Talpur, A.D., 2014. Mentha piperita (Peppermint) as feed additive enhanced growth performance, survival, immune response and disease resistance of Asian seabass, Lates calcarifer (Bloch) against Vibrio harveyi infection. Aquaculture. Vol. 420, pp: 71-78.
  25. Vahedi, V.; Hedayat Evrigh, N.; Behroozlak, M. and Dirandeh E., 2018. Antioxidant effects of thyme (Thymus vulgaris L.)extract on ram sperm quality during cryopreservation. Vol. 8, No. 2, pp: 263-269
  26. Yanishlieva, N.V. and Marinova, E.M., 1996. Antioxidative effectiveness of some natural antioxidants in sunflower oil. Zeitschrift für Lebensmittel-Untersuchung und Forschung. Vol. 203, No. 3, pp: 220-223.
  27. Zanganeh, Z.; Zhandi, M.; Zare Shahneh, A.; Najafi, A.; Mahdi Nabi, M. and Mohammadi-Sangcheshmeh, A., 2013. Does rosemary aqueous extract improve buck semen cryopreservation? Small Ruminant Research. Vol. 114, No. 1, 120 p.
 
فصلنامه محیط زیست جانوری
دوره 11، شماره 1
اردیبهشت 1398
صفحه 83-90

فایل ها

هم رسانی

ارجاع به این مقاله

آمار