توزیع و فراوانی میکروپلاستیک ها در دوکفه ‏ای Pinctada radiata و رسوبات بندرلنگه در سواحل غربی خلیج فارس

نوع مقاله : محیط زیست جانوری

نویسندگان

1 گروه شیلات و محیط زیست، دانشکده علوم و فنون دریایی، دانشگاه هرمزگان، بندرعباس، ایران

2 اداره کل حفاظت محیط زیست استان ایلام، ایلام، ایران

چکیده

میکروپلاستیک‏ ها تکه ‏های کوچکی از زباله‏ های پلاستیکی (کم ­تر از 5 میلی ­متر)، هستند که در سواحل، سطح دریا و بستردریا وجود دارد. مطالعه حاضر فراوانی، توزیع و انواع میکروپلاستیک‏ ها را در توده احشایی دوکفه ‏ای Pinctada radiata  و رسوبات نمونه ­برداری شده در سواحل بندرلنگه مورد بررسی قرار داده است. جداسازی میکروپلاستیک‌ها به روش اختلاف چگالی و روش هضم برای دوکفه‏ ای انجام گرفت. اسپکتروفتومتری، FT-IR و SEM-ED جهت شناسایی جنس پلیمر به­ کار گرفته شد. میکروپلاستیک‏ های یافت شده دارای رنگ­ های متنوعی از جمله سیاه، سفید، شفاف، قرمز، صورتی و سبز بودند. با استفاده از اطلاعات به ­دست آمده، در ایستگاه‏ های بندرلنگه، میانگین تعداد کل میکروپلاستیک ‏های استخراج شده از توده احشایی P. radiata برحسب گرم 0/03±0/15 تعداد/گرم و بر حسب فرد 1/13±3/94 تعداد/فرد، تعداد میکروپلاستیک ‏ها در رسوبات بندرلنگه 0/71±34/5 در کیلوگرم رسوب اندازه­ گیری شد. شایع‏ ترین پلیمر‏های یافت شده، پلی‏اتیلن (PE)، پلی‏اتیلن ترفتالات (PET) و نایلون بودند. فراوان‏ ترین نوع میکروپلاستیک‏ های جدا شده از دوکفه ای P. radiata میکروفیبرها و قطعات بودند. فراوان ­ترین اشکال میکروپلاستیک استخراج شده در رسوبات فیبر و فیلم بودند. مطالعه حاضر می‌تواند اطلاعات مفیدی را برای تحقیقات بیش ­تر و هم چنین پیش‌ زمینه‌ ای جهت کنترل و پایش این آلاینده در محیط دریایی خلیج فارس فراهم نماید. 

کلیدواژه‌ها

عنوان مقاله [English]

Distribution and frequency of microplastics in Bivalve of Pinctada radiata and sediments of Bandar Lengehe

نویسندگان [English]

  • Marzieh Nouri 1
  • Parisa Amiri 2
  • Abolfazl Naji 1
1 Department of Fisheries and Environment, Faculty of Marine Science and Technology, Hormozgan University, Bandar Abbas, Iran
2 Department of Environmental Protection, Ilam Province, Ilam, Iran
چکیده [English]

Microplastics are small pieces of plastic waste (less than 5 mm), which are found along the coast, the sea level and the bedding. The present study examines the frequency, distribution, and forms of microplastics in bivalve tissues and sediments sampled on the coast of Bandar Lengeh. Microplastic separation was performed by spectral density and spectrophotometric (FT-IR) and (SEM-ED) methods for polymer detection. The microplastics found were varied colors including black, white, transparent, red, pink and green. Using the obtained data, at the Lengeh port stations, the average total number of extracted microplasms per shell was 3.93 and the number of microplastics in Bandar-Lengeh sediments was 34.5 ± 0.17. The most commonly found polymers were polyethylene (PE), polyethylene terephthalate (PET) and nylon. The most abundant type of micro-plastics isolated from Pinctada radiata, microfibers and fragments were extracted from fiber and film sediments. The present study can provide useful information for further research as well as forensic monitoring and monitoring of this contaminant in the Persian Gulf marine environment.

کلیدواژه‌ها [English]

  • Microplastic
  • Marine Garbage
  • persian Gulf
  • Marine Ecosystem

مراجع

  1. Aathi, K.; Ramasubramanian, V.; Uthayakumar, V. and Munirasu, S., 2013. Effect of supplemented diet on survival, growth, hematological, biochemical and immunological responses of Indian major carp labeo rohita. InternationalResearchJournalofPharmacy. Vol. 4. No. 5, pp: 141-147.
  2. Ahmadi, S.; Farhangi, M.; Rafii, G.R. and Ghaednia, B., 2008. Effect of different levels of astaxsnthin on growth parameters and survival in Litopenaeus vannamei. Journal of Marine Sciences and Technology. Vol. 1-2, pp: 1-12.
  3. Beutner, S.; Bloedorn, B.; Frixel, S.; Blanco, I.H.; Hoffman, T. and Martin, H., 2001. Quantitative assessment of antioxidant properties of natural colorants and phytochemicals: carotenoids, flavonoids, phenols and indigoids. The role of  β-carotene in antioxidant functions. Journal of the Science of Food Agriculture. Vol, 81, pp: 559-568.
  4. Burtis, C.A.; Ashwood, E.R. and Brund, D.E., 1994. Tietz Textbook of Clinical Chemistry (5thed.). W.B. Sunders Company. Philadelphia. USA. 560 p.
  5. Chein, Y.H. and Jeng, S.C., 1992. Pigmentation of kuruma  prawn, Penaeus japonicus bate, by various pigment  sources and levels and feeding regimes. Aquaculture. Vol. 102, pp: 333-346.
  6. Chew, B.P.; Wong, M.W.; Park, J.S. and Wong, T.S., 1999. Dietary b-carotene and astaxanthin but not canthaxanthin stimulate splenocyte function in mice, Anticancer Research.  Vol. 19, pp: 5223-5227.
  7. Christiansen, R.; Lie, Q. and Torrissen, O.J., 1994. Effect of astaxanthin and vitamin A on growth and survival during first feeding of Atlantic salmon, Salmo salar L. Aquaculture and Fisheries Management. Vol. 25, pp: 903-914.
  8. Ellis, A.E., 1990. Lysozyme Assays:In Stolen JS, Fletcher TC, Anderson DP, Roberson BS,Van Muiswinkel WB, editors.Techniques in :Fish Immunology. Fair Haven, NJ: SOS Publications. 650 p.
  9. Faghani, T.; Soltani, M.; Shamsae, M. and Matinfar, A., 2013. The effect of dietary natural Astaxanthin (Haematococcus pluvialis) on the growth parameters, carcases and liver chemical composition injuvenile beluga (Huso huso Linnaeus, 1758). Journal of Marine Biology, Islamic Azad University, Ahvaz Branch. Vol. 5, pp: 69-78.
  10. Farhangi, M.; Ahmadi, S.; Rafii, G.R.; ghaednia, B. and Taghavi, R., 2013. Effect of different levels of dietary astaxantin on biochemical parameters and non- specific immune in Litopenaeus vannamei against low oxygen stress Journal of Marine Sciences and Technology. Vol. 2, pp: 103-114.
  11. Guerin, M.; Huntley, M.E. and Olaizola, M., 2003. Haematococcus astaxanthin: applications for human health and nutrition. Trends Biotechnology. Vol. 21, pp: 210-216.
  12. Harikrishnan, R.; Kim, J.; Balasundaram, C. and Heo, M., 2012. Immunomodulatory effects of chitin and chitosan enriched diets in Epinephelus bruneus against Vibrio alginolyticus infection. Aquaculture. Vol. 326, pp: 46-52.
  13. Hussein, G.; Sankawa, U.; Goto, H.; Matsumoto, K. and Watanabe, H., 2006. Astaxanthin,  a carotenoid with potential in human health and nutrition. Journal of Natural Products. Vol. 69,  pp:  443-449.
  14. Ilyasov, Y. and Golovin, P., 2003. The effect of NatuRose® on growth, survival and physiological state of twoyear-old marketable sturgeons. On file at Cyanotech Corporation.
  15. Kumar, S.; Sahu, N.P.; Pal, A.K.; Choudhury, D.; Yengkokpam, S. and Mukherjee, S.C., 2005. Effect of dietary carbohydrate on haematology, respiratory burst activity and histological changes in Labeo rohita juveniles. Fish and Shellfish Immunology. Vol. 19, pp: 331-344.
  16. Li, M.; Wu, W.; Zhou, P.; Xie, F.; Zhou, Q. and  Mai, K., 2015. Comparison effect of dietary astaxanthin and Haematococcus pluvialison growth performance, antioxidant status and immune response  of  large yellow  croaker Pseudosciaena  crocea. Aquaculture. Vol. 434, pp: 227-232.
  17. Liu, F.; Shi, H.; Guo, Q.; Yu, Y.; Wang, A.; Lv, F. and Shen, W., 2016. Effects of astaxanthin and emodin on the growth, stress resistance and disease resistance of yellow catfish (Pelteobagrus fulvidraco). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 51, pp:125-135.
  18. Merchie, G.; Kontara, E.; Lavens, P.; Robles, R.; Kurmaly, K. and Sorgeloos, P., 1998. Effect of  vitamin  C and astaxanthin on stress and disease resistance of postlarval tiger shrimp, Penaeus monodon (Fabricius). Aquacultue Research. Vol. 29, pp: 579-589.
  19. Nakano, T.; Kanmuri, T.; Sato, M. and Takeuchi, M., 1999. Effect of astaxanthin rich red yeast (Phaffia rhodozyma) on oxidative stress in rainbow trout Biochimica et Biophysca Acta. Vol. 426, pp: 119-125.
  20. Niu, J.; Tian, L.X.; Liu, Y.J.; Yang, H.J.; Ye, C.X.; Gao, W. and Mai, K.S., 2009. Effect of dietary astaxanthin on growth, survival and stress tolerance of postlarval shrimp,Litopenaeus vannamei. Journal of World Aquacultue Society. Vol. 40, pp:795-802.
  21. Ravelo, C.; Magariños, B.; Herrero, M.C.; Costa, L.; Toranzo, A.E. and Romald, J.L., 2006. Use of adjuvanted vaccines to lengthen the protection against Lactococcusis in rainbow trout (Oncorhynchus mykiss).Aquaculture. Vol. 251, pp: 153-158.
  22. Rehulka, J., 2000. Influence of astaxanthin on growth rate, condition, and some blood indices of rainbow trout,Oncorhynchus mykiss Aquaculture. Vol. 190, pp: 27-47.
  23. Sugita, H.; Okano, R.; Suzuki, Y.; Iwai, D.; Mizukami, M.; Akiyama, N. and Matsuura, S., 2002. Antibacterial abilities of intestinal bacteria from larvae and juvenile Japanese flounder against fish pathogens.FisheriesScience. Vol.2. No. 68, pp: 1004-1011.
  24. Wahli, T.; Verlhac, V.; Griling, P.; Gabaudan, J. and Aebischer, C., 2003. Influence of dietary vitamin C on the wound healing process in rainbow trout (Oncorhyncus mykiss) Aquaculture. Vol. 225, pp: 371-386.
فصلنامه محیط زیست جانوری
دوره 11، شماره 4
دی 1398
صفحه 337-344

فایل ها

هم رسانی

ارجاع به این مقاله

آمار