1
دانشکده علوم دریایی، دانشگاه دریانوردی و علوم دریایی چابهار، چابهار، ایران
2
گروه علوم درمانگاهی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه شهید چمران اهواز، اهواز، ایران
چکیده
استفاده از پروبیوتیک ها در آبزی پروری به دلیل اثرات مفید در سلامت ماهی رشد فزاینده ای داشته است. یکی از مشکلات اصلی استفاده از پروبیوتیک ها غیرفعال شدن آن ها در شرایط معدی – روده ای ماهی است، محافظت پروبیوتیک ها با پوشش های فیزیکی توان پروبیوتیکی آن ها را بهبود می بخشد، لذا در این تحقیق اثر ریزپوشانی باکتری پروبیوتیکی لاکتوباسیلوس پلانتاروم (Lactobacillusplantarum) با نانوذرات آلژینات/کیتوزان بر ویژگی های پروبیوتیکی آن در شرایط برونتنی (Invitro) و نیز اثرات پروبیوتیکی آن در فیل ماهی جوان (Husohuso) ارزیابی شد. ابتدا اثر ریزپوشانی باکتری بر ویژگی های پروبیوتیکی باکتری در شرایط برونتنی شامل: تحمل pH، تحمل صفرا، زنده مانی در شرایط مشابه معدی- روده ای بررسی شد، سپس اثر پروبیوتیک در فیل ماهی جوان مورد ارزیابی قرار گرفت. بدین منظور تعداد 480 قطعه فیل ماهی با میانگین وزنی 2/8±27/2 گرم به چهار تیمار در سه تکرار به صورت زیر تقسیم شدند: تیمار 1 T با خوراک حاوی آلژینات/کیتوزان بدون پروبیوتیک، 2 T با خوراک حاوی پروبیوتیک ریزپوشانی شده با آلژینات/کیتوزان، 3 T با خوراک حاوی پروبیوتیک بدون پوشش و گروه شاهد با خوراک پایه تغذیه شدند. ماهیان به مدت 60 روز با جیره های آزمایشی تغذیه شدند. پس از اتمام دوره آزمایش، تیمارها به مدت 15 روز با غذای فاقد پروبیوتیک غذادهی شدند. نمونه گیری از ماهیان در روزهای 30، 60 و 75 تحقیق انجام گرفت و آنزیم های اکسیداتیو و آنزیم های کبدی در روزهای 30، 60، 75 مورد بررسی قرار گرفتند. نتایج مرحله اول تحقیق نشان داد بیش ترین میزان پراکسید دیسموتازو گلوتاتیون پراکسیداز در تیمار تغذیه شده با آلژینات/کیتوزان و پلانتاروم ریزپوشانی شده در روزهای 30 و 60، بیش ترین میزان فعالیت مالون دیآلدئید در تیمار تغذیه شده با پلانتاروم ریزپوشانی شده در روز 30 مشاهده شد و بیش ترین میزان فعالیت کاتلاز در تیمار تغذیه شده با پلانتاروم در روز 30 مشاهده شد. به نظر می رسد ریزپوشانی باکتری با نانوذرات کیتوزان/آلژینات کارایی پروبیوتیکی باکتری لاکتوباسیلوس پلانتاروم را بهبود بخشید (0/05>P) و توانسته است عملکرد مثبت پروبیوتیک را بهبود بخشد.
سالنامه آماری سازمان شیلات ایران. 1392. سازمان شیلات ایران، معاونت برنامه ریزی و توسعه مدیریت، دفتر برنامه و بودجه.
محمدیان، ت.، 1392. ارزیابی توان پروبیوتیکی و تحریک کنندگی ایمنی برخی لاکتوباسیلوس های جدا شده از روده ماهی شیربت Barbus grypus . پایان نامه دوره دکترای تخصصی، دانشگاه شهید چمران اهواز، دانشکده دامپژشکی. 184صفحه.
Ai, Q.; Xu, H.; Mai, K.; Xu, W.; Wang, J. and Zhang, W., 2011. Effects of dietary supplementation of Bacillus subtilis and fructooligosccharide on growth performance, survival, non-specific immune response and disease resistance of juvenile Large Yellow Croaker, Larimichthys crocea. Aquaculture. Vol. 317, pp: 155-161.
Arıg, N.; Suzer, C.; Gokvardar, A.; Basaran, F.; Coban, D.; Yildirim, S.H.; FIrat, K. and Saka, S., 2013. Effects of probiotic (Bacillus sp.) supplementation during larval development of Gilthead Sea bream (Sparus aurata, L.). Turkish Journal of Fisheries and Aquatic Sciences. Vol. 13, No. 3, pp: 19-25.
Ellman, G.l., 1959. Tissue sulfhydryl groups. Archive of Biochemistry and Biophysics. Vol. 82, pp: 70-77.
FAO. 2010. The State of World Fisheries and Aquaculture. Rome. 180 p.
Fuller, R., 1989. Probiotics in man and animals. J. Appl. Bacteriol. Vol. 66, pp: 365-378.
Halliwell, B. and Gutteridge, J.M.C., 1999. Free radicals in biology and medicine. 3 rd edn. New York: Oxford University Press, Inc.
Hartanti, A.W., 2010. Evaluation of antidiarrheal activity of Lactobacillus isolates from breast milk. Bogor: Bogor Agricultural University, MSc thesis.
Hasting, B.E. and Gascoyne, S.C., 1992. Trace mineral levels in guanaco. Research in Veterinary Science. Vol. 131, pp: 14-15.
Irianto, A. and Austin, B., 2002. Probiotics in aquaculture. Journal of Fish Diseases. Vol. 25, pp: 633-642.
Koroluk, M.; Ivanova, L.; Majorova, I. and Tokarev, V., 1988. Method for determination ofcatalase activity Laboratory Work Laboratornoe Delo, in, in Russian. Vol. 11, pp: 16-19.
Kullisaar, T.; Songisepp, E.; Aunapuu, M.; Kilk, K.; Arend, A. and Mikelsaar, M., 2003. Antioxidative probiotic fermented goats' milk decreases oxidative stress- mediated atherogenicity in human subjects. Br J Nutr. Vol. 90, No. 2, pp: 449-456.
Mann, T. and Keilin, D., 1938. Haemocuprein, copper-protein compounds of blood and liver in mammals. Proceedings of the Royal Society of London B, 126: 303-315.
McCord, J.M. and Fridovich, I., 1969. Superoxide dismutase, an enzymatic function for erythrocuprein. The Journal of Biological Chemistry. Vol. 244, pp: 6049-6055.
Martı´nez-Alvarez, R.M.; Morales, A.E. and Sanz, A., 2005. Antioxidantdefenses in fish: biotic and abiotic factors. Review Fish Biology &Fisheries. Vol. 15, pp: 75-88.
Merrifield, D. and Ringo, E., 2014. Aquaculture nutrition: Gut health, probiotics and prebiotics. Oxford, UK: Wiley Blackwell. pp: 401-418.
Mikelsaar, M. and Zilmer, M., 2009. Lactobacillus fermentum ME 3 an antimicrobial & antioxidative probiotic. Microbial Ecology in Health and Disease. Vol. 21, pp: 1-27.
Mona, M.H.; Rizk, E.S.T.; Salama, W.M. and Younis, M.L., 2015. Efficacy of probiotics, prebiotics, and immunostimulant on growth performance & immunological parameters of Procambarus clarkii juveniles. The Journal of Basic & Applied Zoology. Vol. 69, pp: 17-25.
Moss, D.W. and Henderson, A.R., 1999. Clinical enzymology. In: Burtis, C.A. and Ashwood, E.R., Editors. Tietz Textbook of Clinical Chemistry. 3rd edition. Philadelphia: W.B Saunders Company. pp: 617-721.
Nabas, Z.; Haddadin, M.; Haddain, J. and Nazer, I.K., 2014. Chemical Composition of Royal Jelly and Effects of Synbiotic with Two Different Locally Isolated Probiotic Strains on Antioxidant Activities. Pol. J. Food Nutr. Sci. Vol. 64, No. 3, pp: 171-180.
Peran, L.; Camuesco, D.; Comalada, M.; Nieto, A.; Concha, A. and Adrio, J.L., 2009. Lactobacillus fermentum, a probiotic capable to release glutathione, prevents colonic inflammation in the meta-analysis. East Mediterr Health J. Vol. 15, No. 3, pp: 591-599.
Rahayu, W.P.; Astawan, M.; Wresdiyati, T. and Mariska, S., 2013. Antidiarrheal and antioxidative capability of synbiotic yogurt to the rats. International Food Research Journal. Vol. 20, No. 2, pp: 703-709.
Rahman, M.M.; Islam, M.N.; Islam, M.W. and Kabir, S.M.L., 2004. Kamruzzaman SM. Effects of probiotics supplementation on growth performance and certain haemato- biochemical parameters in broiler chickens. Bangladesh J Vet Med. Vol. 2, No. 1, pp: 39-43.
Reyes-Becerril, M.; Salinas, I.; Cuesta, A.; Meseguer, J.; Tovar-Ramirez, D.; Ascencio-Valle, F. and Esteban, M.A., 2008. Oral delivery of live yeast Debaryomyces hansenii modulates the main innate immune parameters and the expression of immune-relevant genes in the gilthead seabream (Sparus aurata L.). Fish & Shellfish Immunology. Vol. 25, pp: 731-739.
Scoll, P.F.; McCoy, L. and Kensler, T.W., 2009. Groopman JD. Quantitative analysis and chronic dosimetry of the aflatoxin B1 plasma albumin adduct Lys-AFB1 in rats by isotope dilution mass spectrometry. Chem Res Toxicol. Vol. 19, No. 1, pp: 44-49.
Weifen, L.; Xiaoping, Z.; Wenhui, S.; Bin, D.; Quan, L.; Luoqin, F.; Jiajia, Z.; Yue, W. and Dongyou, Y., 2012. Effects of Bacillus preparations on immunity and antioxidant activities in grass carp (Ctenopharyngodon idella). Fish Physiology and Biochemistry. Vol. 38, pp: 1585-1592.
Zhang, C.N.; Li, X.F.; Xu, W.N.; Jiang, G.Z.; Lu, K.L.; Wang, L.N. and Liu, W.B., 2013. Combined effects of dietary fructooligosaccharide and (Bacillus licheniformis) on innate immunity, antioxidant capability and disease resistance of triangular bream (Megalobrama terminalis). Fish and Shellfish Immunology. Vol. 35, pp: 1380-1386.
Ziaei, H.; Karimi Torshizi, M.A.; Bashtani, M.; naeemipour, H. and Zeinali, A., 2009. Efficiency evaluation of antibiotic growth promoter's alternatives on immune response and some blood metabolites in broiler chickens. J Agri Sci Nat Resour. Vol. 16, No. 2, pp: 1-13.
)