اثرات عصاره هیدروالکلی گزنه (Urtica dioica) بر بافت‌شناسی گناد و هورمون‌های جنسی مولدین ماهی قرمز (Carassius auratus)

نوع مقاله : فیزیولوژی (جانوری)

نویسندگان

گروه شیلات، دانشکده شیلات و محیط زیست، دانشگاه علوم کشاورزی و منابع طبیعی گرگان

چکیده

در این مطالعه اثر سطوح مختلف عصاره هیدروالکلی گیاه گزنه (Urtica dioica) بر بافت‌شناسی گناد و هورمون‌های جنسی مولدین ماهی قرمز (Carassius auratus) مورد بررسی قرار گرفت. آزمایش در سه سطح 2، 4 و 8 گرم بر کیلوگرم عصاره گیاهی و گروه شاهد به‌صورت کاملاً تصادفی انجام شد. ذخیره‌سازی با تراکم 5 عدد ماهی با میانگین وزنی 4/70± 21/88 گرم در هر مخزن فایبرگلاس 500 لیتری به‌مدت 8 هفته در شرایط یکسان انجام شد.پایش سطح استروئیدهای جنسی نشان داد که اختلاف معنی­ داری در سطح غلظت تستوسترون بین تیمارهای مختلف مشاهده نشد (0/05<P). اما در بررسی سطوح هورمون 17- آلفا هیدروکسی پروژسترون (نانوگرم بر میلی‌لیتر) در مولدین ماده تغذیه ­شده با عصاره گزنه در سطح 2 گرم در کیلوگرم غذا بیش ­تر از سایر تیمارها بود (0/05>P). هم­ چنین در بررسی نمو بافت اندام جنسی در تمامی تیمارها، هر دو جنس نر و ماده در مرحله 4 رسیدگی جنسی قرار داشتند. نتایج نشان می ­دهد که استفاده از عصاره گیاهی گزنه در سطح 2 گرم در کیلوگرم غذا می ­تواند بر توان تولیدمثلی ماهی اثرگذار باشد.

کلیدواژه‌ها

عنوان مقاله [English]

The effects of dietary supplementation of Hydroalcoholic Nettle extract (Urtica dioica) on gonads histological and sexual hormones in Goldfish (Carassius auratus) broodstock

نویسندگان [English]

  • Shabnam Nezhad Moghadam
  • Mohammad Reza Imanpoor
  • Valiolla Jafari
  • Roghieh Safari
Department of Fisheries, Faculty of Fisheries and Environment, Gorgan University of Agricultural Sciences and Natural Resources
چکیده [English]

In this experiment, the effects of different levels of Nettle (Urtica dioica) Hydroalcoholic extracts were investigated on gonads histological structure and sexual hormones in Goldfish (Carassius auratus) broodstock. Trial was performed randomly on three levels: 2, 4 and 8 gr/kg of the extracts and the control group. 5 fish with an average weight of 21.88 ± 4.70 g per 500-liter fiberglass tank were stocked and under the same conditions for 8 weeks fed with different levels of Nettle (Urtica dioica) extracts. Monitoring of plasma sex steroid levels revealed that experimental diets had significantly effect on progesterone levels in females fed 2gr/kg Nettle (P<0.05), but not significant in testosterone in males (P>0.05). In both males and females, gonads were in stage IV. Results showed that supplementation of diet with Nettle extracts can effect on fish reproduction.
 

کلیدواژه‌ها [English]

  • Goldfish
  • Nettle
  • Sex steroid
  • Gonad
  • Reproduction

مراجع

  1. قربانی ­رنجبری، ع.؛ قربانی ­رنجبری، ن.؛ قربانی ­رنجبری، ز. و قربانی ­رنجبری، س.، 1393. بررسی تاثیر عصاره­ هیدرواکسی گزنه بر تغییرات هورمون تسترون و اسپرماتوژتر در موش صحرایی. مجله تازه ­های بیوتکنولوژی سلولی مولکولی. شماره 14، صفحات 31 تا 39.
  2. صفری، ر.؛ ایمانپور، م.ر. و شعبانپور، ب.، 1387. اثر مراحل رسیدگی جنسی روی ترکیب شیمیایی عضله ماهی سفید (Rutilus frisii kutum) در خلیج گرگان. مجله علوم کشاورزی و منابع طبیعی. دوره 16، شماره 1. صفحات 28 تا 34.
  3. عبدالله‌مشایی، م.، 1388. فیزیولوژی ماهی در سیستم‌های پرورش متراکم. انتشارات دریاسر. چاپ دوم. 302 صفحه.
  4. Abbas, H.H. and Abbas, W.T., 2011. Assessment study on the use of pawpaw; (Carica papaya)seeds to control (Oreochromis niloticus) breeding. Pakistan Journal of Biological Sciences. Vol. 14, pp: 1117-1123.
  5. Akinbowale, O.L.; Peng, H. and Barton, M.D., 2006. Antimicrobial resistance in bacteria isolated from aquaculture sources in Australia. Journal of Applied Microbiology. Vol. 100, pp: 1103-1113.
  6. Arukwa, A. and Goksory, A., 2003. Egg shell and egg yolk proteins in fish, hepatic proteins for the next generation: Oogenetic, population and evolutionary, implication of endocrine disruption. Comparative Hepatology. Vol. 6, pp: 1-46.
  7. Bapary, M.A.J. and Fainuulelei, P., 2009. Environmental control of gonadal development in the tropical damselfish. Marine Boilogy Research. Vol. 5, pp: 462-469.
  8. Bucholtz, R.H.; Tomkiewicz, J. and Dalskov, J., 2008. Manual to determine gonadal maturity of herring (Clupea harengus). DTU Aqua-report. 197-08, Charlottenlund: National Institute of Aquatic Resources. 45 p.
  9. Caballero, M.J.; Obach, A.; Rosenlund, G.; Montero, D.; Gisvold, M. and Izquierdo, M.S., 2002. Impact of different dietary lipid sources on growth, lipid digestibility, tissue fatty acid composition and histology of rainbow trout, (Oncorhynchus mykiss). Aquaculture. Vol. 214, pp: 253-271.
  10. Citarasu, T.; Sivaram, V.; Immanuel, G.; Rout, N. and Murugan, V., 2006. Influence of selected Indian immunostimulat herbs against white spot syndrome virus (wssv) infection in black tiger shrimp, with reference to haematological, biochemical and immunological changes. Fish and shellfish immunology. Vol. 21, pp: 372-384.
  11. Dada, A.A. and Adeparusi, E.O., 2012. Dietary effects of two medicinal plants (Sesamum indicum) and (Croton zambesicus) on the reproductive indices in female African catfish (Clarias gariepinus) broodstock. Egyptian Journal of Aquatic Research. Vol. 38, pp: 269-273.
  12. Dada, A.A. and Ebhodaghe, B.E., 2011. Effect of (Garcinia kola)seed meal on egg quality of the African catfish (Clarias gariepinus) (Burchell) broodstock. Cameroon Journal of Experimental Biology. Vol. 7, No.1, pp: 1-8.
  13. FAO. 2014. Aquaculture Department 2014. The state of world fisheries and aquaculture. Food and Agriculture Organization of the United Nations, Rome. 243 p.
  14. Feldman, B.F.; Zinkl, J.G. and Jain, N.C., 2000. Schalms Veterinary Hematology. Lippincott Williams and Wilkins. pp: 1120-1124.
  15. Figueiredo Fernandes, A.; Ferreira-Cadoso, J.­V.; Garcia Santos, S.; Monteiro, S.M.; Carrola, J.; Matos, P. and Fontainhas Fernandes, A., 2007. Histopathological changes in liver and gill epithelium of Nile tilapia (Oreochromis niloticus), exposed to waterborne copper. Pesquisa Veterinaria Brasileria. Vol. 27, pp: 103-109.
  16. Friendman, M. and Baron, D.L., 2001. Nutritional and health benefits of soy proteins. Journal of Agricultural and Food Chemistry. Vol. 49, No. 3, pp: 1069-1086.
  17. Genten, F.; Terwinghe, E. and Danguy, A., 2009. Atlas of fish histology. Science publisher. 215 p.
  18. Guzman, J.M.; Norberg, B.; Ramos, J.; Mylonas, C.C. and Manano, E.L., 2008. Vitellogenin, steroid plasma levels and spawning performance of cultured female Senegalese sole. General & Comparative Endocrinology. Vol. 156, pp: 285-297.
  19. Jegede, T., 2010. Control of reproduction in Oreochromis niloticus using Hibiscus rosa-sinensisleaf meal as reproduction inhibitor. Journal of Agricultural Science. Vol. 2, pp: 149-154.
  20. Johnson, I.T.; Gee, J.M.; Price, K.; Curl, C. and Fenwick, G.R., 1986. Influence of saponins on gut permeability and active nutrient transport in vitro. Journal of Nutrition. pp: 2270-2277.
  21. Lapina, N.N., 1978. Seasonal change in the biochemical composition of organs and tissues in (Rutilus rutilus)from the Mozhhaisk Reservior. Vopr. Ikhtiol. pp: 1099-1109.
  22. Lee, W.K. and Yang, S.W., 2002. Relationship between ovarian development and serum levels of gonadal steroid hormones, and Induction of oocyte maturation and ovulation in the cultured female korean spotted sea bass (Lateolabrax maculatus). Aquaculture. Vol. 207, pp: 169-183.
  23. Lourdes, R.F.; Jorge, R.E.; Scott, B.; Dea H.R. and Eliseo, T., 2008. Risks and benefits of commonly used herbal medicines in Mexico. Toxicology and Applied Pharmacology. Vol. 227, pp: 125-135.
  24. Lucidiet, P.; Bemabo, N.; Turriani, M.; Mattioli, M. and Barboni, B., 2003. Cumulus steroido genesis is influenced by the degree of oocyte maturation. Reproductive Biology and Endocrinology. Vol. 1, pp: 45-55.
  25. Miller, D.H. and Ankley, G.T., 2004. Modeling impacts on populations: fathead minnow exposure to the endocrine disruptor 17btrenbolone as a case study. Ecotoxicology and Environmental Safety. Vol. 59, pp: 1-9.
  26. Nayak, S.K., 2010. Role of gastrointestinal microbiota in fish. Aquaculture Research. Vol. 41, pp: 1553-1573.
  27. Opałka, M.; Kamińska, B.; Ciereszko R. and Dusza, L., 2004. Genistein affects testosterone secretion by Leydig cells in roosters (Gallus gallus domesticus). Reproductive Biology. Vol. 4, No. 2, pp:185-193.
  28. Obaro, I.O.; Nzeh, C.G. and Oguntoye, S.O., 2012. Control of Reproduction in (Oreochromis Niloticus) Using Crude Extract of (Azadirachta Indica) Saponin. Advances in Environmental Biology. Vol. 6, No. 4, pp: 1353-1356.
  29. Phelps, P.R. and Popma, J.T., 2000. Sex reversal of tilapia. In: Costa-pierce AB, Rakocy EK (eds) Tilapia aquaculture in the Americas.The World Aquaculture Society: Baton Rouge, Louisiana.Vol. 2,pp: 39-59.
  30. Popesku, J.T.; Martyniuk, C.J.; Mennigen, J.; Xiong, H.; Zhang, D.; Xia, X.; Cossins, A.R. and Trudeau, V.L., 2008. The goldfish (Carassius auratus) as a model for neuroendocrine signalin. Molecular and Cellular Endocrinology. Vol. 293, pp: 43-56.
  31. Raji, Y.; Morakinyo, A.O.; Oloyo, A.K.; Akinsomisoye, O.S.; Kunle-Alabi, O.T.; Esegbue-Peters, P.R.C. and Awobajo, F.O., 2005. Impact of the chloroform extract of (Carica papaya) seed on oesterous cycle and fertility in female albino rats. Journal of Medical Science. Vol. 5, No. 4, pp: 337-343.
  32. Spano, L.; Tyler, C.R.; Aerle, R.V.; Devos, P.; Mandiki, S.N.M.; Silvestre, F.; Thome, J.P. and Kestemont, P., 2004. Effects of atrazine on sex steroid dynamics, plasma vitellogenin concentration and gonad development in adult Goldfish. Aquatic Toxicology. Vol. 6, pp: 369-379.
  33. Srinath, K.; Sridhar, M.; Kartha, P.N.R. and Mohanan, A.N., 2000. Group farming for sustainable aquaculture. Ocean and coastal management. Vol. 43, pp: 557-571.
  34. Zhang, L.; Khan, I.A. and Foran, C.M., 2002. Characterization of the estrogenic response to genistein in Japanese medaka (Oryzias latipes). Comparative Biochemistry and Physiology C. Vol. 132, pp: 203-211.

 

فصلنامه محیط زیست جانوری
دوره 10، شماره 3
مهر 1397
صفحه 309-314

فایل ها

هم رسانی

ارجاع به این مقاله

آمار